ADANSON1A est un journal international consacré aux divers aspects de la botanique phanéro-

gamique et plus particulièrement à la connaissance systématique du monde végétal intertropical.

Chaque volume annuel se compose de quatre fascicules trimestriels totalisant 500 à 600 pages.

ADANSONIA is an international journal ofbotanyof the vascular plants, particuiarly devoted

to ail aspects of the investigation of tropical floras. One annual volume consists in 4 quarterly issues

amounting to a total of 500-600 pages.

Adansonia est publié par le Laboratoire de Phanérogamie, Muséum National d’Histoire

Naturelle, Paris, France.

Direction /Directors: A. Aubréville, J.-F. Leroy.

Secrétaire général / General secretary : A. Le Thomas.

Rédaction ! Edit or : J. Jérémie.

Comité de lecture /Référées: J. Bosser, Paris; E. Boureau, Paris; F. Ehrendorfer, Wien; F. R. Fos-

berg, Washington; F. Hallé, Montpellier; V. H. Heywood, Reading; L. A. S. Johnson, Sydney;

C. Kalkman, Leiden; R. Letouzey, Paris; R. E. G. Pichi Sermolli, Perugia; P. H. Raven,

Saint-Louis; R. Schnell, Paris; A. Takhtajan, Leningrad; M. Van Campo, Montpellier.

Manuscrits : Les articles proposés au journal pour acceptation ne doivent pas, en principe,

excéder 25 pages une fois imprimés, illustrations comprises. Ils sont examinés par les responsables

de la revue et soumis au besoin à un membre compétent du Comité de lecture. Un manuscrit peut

être retourné à son auteur pour modification; il est instamment recommandé aux auteurs de lire

attentivement les instructions détaillées en page 3 de cette couverture. Une fois acceptés les manus¬

crits sont normalement publiés rapidement (4 à 6 mois). En cas de refus d’un article, seules les

pièces originales (illustrations) seront retournées à l’auteur.

Manuscripts : Papers submitted for publication should not exceed 25 printed pages. They are

examined by the éditorial board, and if necessary submitted to a spécial referee. A manuscript may be

returned to its author to be modified, and authors should carefully read the directions printed on next

inner cover page (English version sent on request). Accepted manuscripts are normally quickly published

( within 4 to 6 months). Only original documents such as illustrations of a rejected paper are returned

to the author.

Tirés-à-part : 50 tirés-à-part gratuits sont attribués par article, quel que soit le nombre de ses

auteurs. Des exemplaires supplémentaires peuvent être commandés lors de l’envoi du manuscrit.

Reprints: 50 copies of each paper are printed free of charge, irrespective of the number of its authors.

Additiotml copies may be ordered when the manuscript is being sent.

Correspondance : Toute correspondance (manuscrits, commandes, abonnements) doit être

adressée à :

Postal address: Any correspondence (manuscripts, orders, subscriptions) should be adressed to:

ASSOCIATION DE BOTANIQUE TROPICALE (Adansonia)

16, rue Buffon

75005 PARIS, France.

Abonnements /Subscriptions : Les abonnements permanents (standing orders) sont acceptés et

soumis à préfacturation (prepayment).

Tarif (price) 1979 (vol. 19) : FF 230; 1980 (vol. 20) : FF 260.

AUTRES PUBLICATIONS DE L’ASSOCIATION DE BOTANIQUE TROPICALE

Flore de Madagascar et des Comores, 86 vol. parus jissued (77 disponibles /available) FF 3889.

Flore du Gabon, 24 vol. parus lissued .FF 1944.

Flore du Cameroun, 20 vol. parus jissued .FF 1560.

Flore du Cambodge, Laos et Viêt-Nam, 16 vol. parus lissued .FF 1065.

Flore de la Nouvelle-Calédonie et dépendances, 8 vol. parus jissued. .FF 1145.

(prix révisables sans préavis)

Source : MNHN, Paris

fl fl

TRAVAUX PUBLIÉS

SOUS LA DIRECTION DE

A. AUBRÉVILLE et Jean-F. LEROY

Membre de l’Institut Professeur

Professeur Honoraire au Muséum

au Muséum

Avec la participation financière du Ministère de la Coopération

Série 2

TOME 20

Fascicule 4

Date de Publication : 27 MAI 1981

ISSN 0001-804X

MUSÉUM NATIONAL D’HISTOIRE NATURELLE

Laboratoire de Phanérogamie

16, rue Buffon, 75005 Paris

1981

Source : MNHN, Paris

SOMMAIRE — CONTENTS

Éditorial.351

Halle, N. — Données nouvelles et carpogrammes d’Orchidées

canaques.353

New data and carpograms of Orchids from New Caledonia.

Govindarajalu, E. — Studies in Cyperaceæ. — XIX. Novelty in

Lipocarpha : L. raynaleana and its végétative anatomy. . . . 369

Étude des Cypéracées. — XIX. Nouveauté dans le genre Lipocarpha: L.

raynaleana et son anatomie végétative.

Morat, Ph. — Note sur les Graminées de la Nouvelle-Calédonie.

VI : Lepturopetium, genre nouveau endémique.377

Notes on the Gramineæ of New Caledonia. VI: Lepturopetium Morat, gen.

nov., an endemic new genus.

Bullock, S. H. — Dynamics of végétative shoots of three species

of Aframomum (Zingiberaceæ) in Cameroun.383

Étude de population de rameaux végétatifs chez 3 espèces d'Aframomum

(Zingiberaceæ) au Cameroun.

Brunel, J. F. & Roux, J. — Phyllantheæ de Madagascar. I : à propos

de deux Phyllanthus de la sous-section Swartziani Webster. . . 393

Phyllantheæ of Madagascar. I : notes on two species of Phyllanthus of the

subsect. Swartziani Webster.

Jacques-Félix, H. — Observations sur les caractères staminaux et

la classification des Osbeckieæ (Melastomataceæ) capsulaires

africaines.405

Remarks on the staminal characters of the African capsuliferous Osbeckieæ

( Melastomataceæ) and their bearing on the taxonomy of thisgroup.

Musselman, L. J. & Parker, C. — Surface features of Striga seeds

(Scrophulariaceæ).431

Caractères de surface des graines de Striga ( Scrophulariaceæ).

Friedmann, F. — Sterculiacées et Lécythidacées nouvelles aux Masca¬

reignes .439

New Sterculiaceæ and Lecythidaceæ from the Mascarene Islands.

Ntépé, C. — Une nouvelle espèce pour le genre Rhektophyllum N. E.

Brown (Araceæ).451

A new species of the genus Rhektophyllum N.E. Brown (Araceæ).

Source : MNHN, Paris

EDITORIAL

Pour diverses raisons, Adansonia doit renoncer, au moins formelle¬

ment, à son identité. Ce fascicule est le dernier de la série aujourd’hui

familière qu’avait fondée le P r A. Aubréville en 1960 et dont, lui et moi,

nous assurions conjointement la direction depuis 1970, avec la collaboration

de Madame Le Thomas. Série, est-il besoin de le rappeler, qui symbolisait,

dans tous les grands Instituts de Botanique taxonomique étrangers, la

présence du Muséum de Paris. Elle était pour nous ce que sont le Kew

Bulletin pour Londres, Blumea pour Leyde, Candollea pour Genève, Will-

denowia pour Berlin, le Botaniska Notiser pour Stockholm, ... Je crois

pouvoir réaffirmer que par la qualité, dans la forme comme dans le fond,

elle a honoré hautement le Muséum de Paris et la Botanique tropicale. En

particulier, dans les pays francophones elle était le principal porte-parole

des sciences de la nature, et le Ministère de la Coopération, qui en était

conscient, nous octroyait une forte subvention annuelle. Adansonia comptait

essentiellement par la nature de son message : message unique en France,

dans le domaine de la Botanique tropicale, en ce que celle-ci, dans le cas pré¬

sent, se trouve associée à la gestion scientifique du plus grand herbier mon¬

dial. Il est redoutable, pour qui ou quoi que ce soit, de tirer son impor¬

tance d’une singularité alors que se déploie par ailleurs, comme un rouleau

compresseur, la normalisation. Adansonia n’a pu échapper tout à fait à celle-

ci, bien que la singularité en cause n’apparût telle qu’en France — car à

l’échelle mondiale nous étions et nous sommes resté l’un des grands Ins¬

tituts de Phytotaxonomie.

Le prochain fascicule d’ Adansonia (1981, n° 1) sortira avec l’intitulé

« Bulletin du Muséum National d'Histoire Naturelle, Paris, section B, Adan¬

sonia », sous le format du Bulletin du Muséum dont les services assureront

la diffusion; mais en fait Adansonia restera identique à elle-même avec une

entière autonomie rédactionnelle et continuant, comme par le passé, à

rendre compte des principaux résultats de la recherche en Botanique phané-

rogamique, principalement tropicale. J’assurerai la direction de cette revue,

avec, à mes côtés, Joël Jérémie, et avec le concours de tous les membres

du Laboratoire de Phanérogamie. J’espère que les lecteurs A'Adansonia

et notamment les botanistes français et étrangers, continueront à nous

accorder toute leur confiance.

J.-F. Leroy

Source : MNHN, Paris

DONNÉES NOUVELLES ET CARPOGRAMMES D’ORCHIDÉES

CANAQUES

N. Halle

Hallé, N. — 27.05.1981. Données nouvelles et carpogrammes d’Orchidées

canaques, Adansonia, ser. 2, 20 (4) : 353-368. Paris. ISSN 0001-804X.

Résumé : Dendrobium sous-genre Inobulbon de Nouvelle-Calédonie est défini

à partir de données nouvelles. Bulbophyllum corythium N. Hallé est une espèce

nouvelle; B. christophersenii L.O. Williams et Liparis cæspilosa Lindl. sont

nouveaux pour la Nouvelle-Calédonie. Diplocaulobium ouhinnæ (Schltr.) Krànz-

lin est revu d'après de nouvelles récoltes. 87 espèces, appartenant à 45 genres,

sont comparées entre elles par des caractères simples des fruits (carpogrammes).

Abstract ; Dendrobium subgen. Inobulbon from New Caledonia is defined

with new data. Bulbophyllum corythium N. Hallé is a new species; B. christo¬

phersenii L. O. Williams and Liparis cæspilosa Lindl. are new for New Caledonia.

Diplocaulobium ouhinnæ (Schltr.) Krânzlin is revised with new records. 87 New

Caledonian species from 45 généra are compared by évident characters of the

fruit (carpograms).

Nicolas Hallé, Laboratoire de Phanérogamie, 16 rue Buffon, 75005 Paris, France.

I. Dendrobium sous-genre Inobulbon

Un genre Inobulbon avait été établi par Krânzlin en 1910; le nom

avait été créé par Schlechter en 1906, pour une section du genre Dendro¬

bium, et comprenait deux variétés du D. muricatum Finet : var. muricatum

et var. munificum Finet, décrites en 1903 d’après des récoltes de Balansa

faites en 1868 et 1869. En 1910, Krânzlin préféra voir là deux espèces

distinctes, opinion que nous avons maintenue en 1977. Par contre nous

n’avons pas approuvé le découpage générique, proposé par Krânzlin, effec¬

tué à partir de données morphologiques insuffisantes, la pollinie et le fruit

n’étant pas connus, et prenant appui sur un caractère important mais erroné.

Page 316, dans sa description, Krânzlin écrit : « mentum sepalorum

lateralium nullum », ce qui est tout à fait faux, et la même erreur est exprimée

dans sa clé des genres p. 25 : « mentum nullum ». En fait les deux espèces

ont bien un mentum et une pollinie qui s’accordent parfaitement avec les

Dendrobium. Présentement ce sont des caractères tirés des fruits, de leur

structure et mode de déhiscence qui nous ont fourni des arguments origi¬

naux importants, ignorés de Krânzlin, justifiant le maintien d 'Inobulbon

au rang de sous-genre.

Dendrobium subgen. Inobulbon (Schlechter) N. Hallé, stat. nov.

— Dendrobium sect. Inobulbon Schltr., Bot. Jahrb. 39 : 69 (1906).

— Inobulbon (Schltr.) Schltr. & Krânzlin, Pflanzenr. 50 (1) : 316 (1910).

Nouvelle description : Ce nouveau sous-genre est voisin du sous-

genre Dendrobium Sw. ; il se distingue par son fruit pendant obovoïde, déhis-

Source : MNHN, Paris

354 —

Source : MNHN, Paris

— 355 —

cent par 6 courtes fentes subapicales tandis que les valves fertiles très

charnues restent cohérentes depuis la base jusqu’au milieu du fruit. Les

lèvres placentifères sont rapprochées entre elles et peu saillantes au milieu

de la face interne des valves fertiles; ces valves ont un sillon longitudinal

bien marqué sur la face dorsale. Le mentum est court mais évident. Le

labelle est brusquement infléchi vers le bas au-delà de son aire proximale.

Les fruits des deux espèces, étudiés dans des conditions optimales de

maturité, sont semblables : larges subapicalement au niveau des courtes

fentes de déhiscence qui apparaissent bien avant la dessication des valves,

celles-ci restant longtemps très charnues. Les fibres persistantes et hérissées

des pseudobulbes, et le curieux mode de vieillissement de ces derniers

(voir N. Halle : 138, tab. 65,fig. 3, 1977) sont des caractères qui contri¬

buent à valoriser le nouveau sous-genre. — PI. 1.

Deux espèces.

1. Espèce-type : Dendrobium muricatum Finet, Bull. Soc. Bot. France

50 : 377, tab. 14, fig. 1-6 (1903), excl. var. munificum Finet; N. Halle,

in Flore Nouvelle-Calédonie 8 : 135, tab. 65 et 66 (1-13) (1977).

Nouvelles récoltes : N. Halle 6996, Mt Nakada, 900 m, 19.6.1979 (fir.); Veillon

s . n ., Mt Ninga, 6.1979 (fr.).

2. Dendrobium munificum (Finet) N. Hallé, Flore Nouvelle Calédonie

8 : 140, fig. 4\ 6\ 10', IV (1977); L’orchidophile 32 : 1000, 4 fig. (1978).

Nouvelles récoltes : N. Hallé 6945, scierie E Katricoin, 7.6.1979 (fr.).

Nota : Ces deux espèces ont déjà été considérées comme ornementales

par A. Guillaumin en 1921 (p. 154).

IL Dendrobium mortii F. Muell., Fragm. 1 : 214 (déc. 1859).

Cette espèce dont le type est de la côte Est de l’Australie (H. Beckler,

Riv. Hastings) a été reconnue par D. F. Blaxell (in lin. MacKee 22.3.1979)

comme identique au D. chalandei (Finet) Krânzlin de la Nouvelle-Calédonie,

synonyme postérieur. Il convient d’ajouter à notre description de 1977,

(p. 146) que le labelle est tourné vers le haut dans la fleur épanouie.

Localités nouvelles : J. Bégaud in MacKee 33656, Hte Diahot, Tendé, 50 m,

8.1977 (fr.); Schmid 1837 bis, Lifou, plateau Chila-Wédoumel, 17.6.1966.

III. Eria karicouyensis Schltr., Bot. Jahrb. 39 : 76 (1906).

Noter comme synonyme très probable le Dendrobium arthrobulbum

Krânzlin, in Sarasin & Roux, Nova Caled. 1 : 83 (1914). En 1977 nous

avions mentionné cette espèce comme Dendrobium insuffisamment connu

(p. 149). Krânzlin a eu le tort de décrire cette espèce sans analyser la

pollinie. Le type a été perdu à Berlin. La description est en accord avec

notre nouveau point de vue.

Source : MNHN, Paris

— 356 —

Source : MNHN, Paris

— 357 —

IV. Bulbophyllum corythium N. Hallé, sp. nov. — PI. 2.

Species epiphylica parvula, pseudobulbis brevibus, subcylindricis, parvis gibbis coro-

natis, in vivo 6 mm altis, in sicco deformatis rugulosis, inter sese contiguis in rhizomate

sympodiaii breviter fractiflexo. Lamina parva, subpetiolata, ca. 10 x 3 mm, apice subacuta.

Inflorescentia 1,5-2 cm longa, scapo gracili micropustulato, floribus Jlavis 1-3 distantibus.

Ovarium micropustulatum. Sepala ad apicem et in nervo mediano micropustulata, 3 mm

longa. Petala angusta, 2 mm longa. Columna brevis, 1 mm alla, denticulis 2 utrinque.

Anthera viridula cum crista parva pustulata. Pollinia bihemispherica. Mentum 1,5 mm

longum. Labellum 2,2 mm longum, geniculatum, linguiforme, vitellinum, anguste insertum,

extus ad basirn bicallosum, ad apicem sulcatum. Fructus flavus vel ruber ellipticus, in sicco

5 X 2,7 mm, in vivo 5 x 3,5 mm, pedunculo 0,5-J mm longo. Quamquam inflorescentiæ

non sunt unifloræ, hæc species sectioni Monilibulbi J. J. Smith affinis est.

Type : J. Bégaud in MacKee 36924, Mt Mou, 950 m, 20.5.1979, floraison jusqu'au

5.6., à Nouméa (holo-, P!).

Notes complémentaires en partie d’après MacKee : Pseudobulbes

verts ou rouge sombre, subprismatiques, larges de 7 mm, hauts de 4-6 mm,

à 6-8 côtes émoussées terminées vers le haut par une petite bosse, d’où une

couronne de petites bosses entourant le mamelon apical où s’insère le

pétiole; la base du pétiole avoisine deux étroites cicatrices d’écailles tôt

caduques. Dessus des feuilles vert foncé brillant, dessous vert clair; fleurs

jaunes à labelle jaune orangé. L’espèce se situe comme suit dans notre clé

des Bulbophyllum de la Nouvelle-Calédonie (p. 165, 1977) :

8’”. Limbe elliptique d’env. 1 cm ; pseudobulbes contigus couronnés de

petites bosses; fleurs par 1-3, jaune pâle à labelle jaune orangé

. 9 bis. B. corythium

Autres récoltes : J. Bégaud in MacKee 32292, Mt Do, 950 m, 22.11.1976, en forêt

humide (fr.); J. Bégaud in MacKee 34441, piste du Dzumac, 900 m, 17.12.1977 (fr.).

Cette très petite espèce endémique est restée cachée jusqu’à sa décou¬

verte en trois stations différentes par un fervent de l’orchidophilie de

terrain et de culture, le néocalédonien J. Bégaud dont les bonnes trouvailles

sont légion.

V. Bulbophyllum christophersenii L. O. Williams, Bot. Mus. Leafl.,

Harvard Univ. 7 (9) : 143 (1939).

Cette espèce dont le type est des Samoa (Chrislophersen & Hume 2297,

Savaii, 8.8.1931, isotype P! ex BISH), est nouvelle pour la Nouvelle-Calé¬

donie. La description originale et les mensurations de Williams s’accordent

de très près avec notre matériel figuré (PI. 3). On peut ajouter les papilles

marginales microscopiques des pétales et du sépale médian qui n’ont

pas été notées. La colonne est dorsalement haute de 3 mm, soit 4 mm

avec l’anthère; les lobes latéraux digitiformes sont longs de 0,8 mm; le

mentum dépasse 2 mm. L’anthère a été trouvée stérile et la pollinie n’est

Source : MNHN, Paris

— 358 —

Source : MNHN, Paris

— 359 —

pas encore décrite. Feuilles un peu plus larges que celles du type. L’espèce

se situe comme suit dans notre clé (p. 165, 1977) :

9”’. Pseudobulbes moyens d’env. 1-1,2 cm, contigus échelonnés; fleurs

solitaires sur un long pédoncule et scape, au total plus de 5 cm sous

le jeune fruit. 12 bis. B. christophersenii

Matériel : J. Bégaud in MacKee 33216, Hte Tchamba, forêt galerie encaissée sur

schistes, 50 m, 22.5.1977 (j.fr. et fr.); 33681, ibid., 150 m, 8.1977 (fragment stérile d’un

matériel en culture); MacKee 38199, cuit. Létocart, 10.1980 (fl.).

VI. Liparis cæspitosa Lindl., Bot. Reg., tab. 882 (1824); Gen. et

sp. Orch. : 32 (1830).

Cette espèce est connue de Madagascar, des îles Mascareignes, Ceylan,

Indonésie et jusqu’aux Nouvel les-Hébrides; nous la signalons pour la

première fois de Nouvelle-Calédonie :

Y. Dolbeau in MacKee 36598, Hte Amoa, 200 m (fl. blanches en cuit, à Nouméa le

15.2.1979), en coussin avec des Mousses; J. Bégaud in N. HaUé 7019, Hte Tchamba,

100 m, 7.1980 (fin de fl., fr.).

Espèce très proche de L. revoluta Hook. & Arnott de Polynésie; elle

s’en distingue par son long scape nu, les bractées, toutes ordinairement

fertiles, étant groupées dans la grappe. Le pseudobulbe est unifolié ce qui

distingue l’espèce du L. elliplica Wight qui est l’espèce néocalédonienne

la plus voisine. Fruit petit, 3,5 x 2,5 mm, triangulaire en coupe, les côtes

stériles sont dans les angles comme chez Oberonia equitans (G. Forster)

Mutel.

VII. Diplocaulobium ouhinnæ (Schltr.) Kranzlin, Pflanzenr. 45:337 (1910)

La fleur, faute de matériel, n’avait pas été analysée en 1977. De nou¬

velles récoltes de MacKee, menées à fleur par J. Bégaud, ont été reçues

au Muséum. Les fleurs sont blanches sauf deux ailes rouges de la partie

proximale du labelle. Le mentum grand, environ 4 mm, est à l’équerre de

la colonne qui est plus courte, environ 3 mm. Le lobe terminal du labelle

est obtus. — PI. 4.

Aux Nouvelles Hébrides il a été trouvé un matériel conspécifique dont

la seule différence est le lobe terminal aigu. L’espèce des Fidji, D. tipuliferum

(Reichenb. f.) Kranzlin, diffère par ses fleurs rouges à labelle Iacinié.

Notes (en partie d’après MacKee) : le D. ouhinnæ est une rare épiphyte,

dressée en touffes denses, trouvée sur Nothofagus à 2 m du sol; pseudo¬

bulbes jaunes; fruits verts presque tous parasités, présentant un petit ombilic

dans le tiers supérieur.

Nouveau matériel : Nouvelle-Calédonie : MacKee 34770, Hle Néaoua, Ouen

Sieu, 600 m, forêt humide sur schistes, 27.2.1978 (fr.); 37352, ibid., cuit. J. Bégaud à

Paita, 24.9.1979 (fl.). — Nouvelles-Hébrides : J. Bégaud in MacKee 37353, N Vaté,

plantation Harris, cuit, à Paita, 24.9.1979 (fl.).

Source : MNHN, Paris

— 360 —

Source : MNHN, Paris

— 361 —

VIII. Carpogrammes d’Orchidées. — PI. 5-9.

Chez beaucoup d’espèces de Nouvelle-Calédonie, le fruit n’était pas

connu en 1977. L’intérêt des caractères du fruit avait alors été souligné,

et de plus en plus s’affirme la possibilité de déterminer spécifiquement le

matériel fructifère. De nouvelles récoltes ont été analysées sur le vivant

en complément de très nombreux fruits en alcool reçus de H. S. MacKee.

Nous présentons sous l’appellation de carpogrammes les données

simples suivantes : numéro d’ordre de référence; contour de la coupe

transversale maximale (le plus souvent coupe à mi-longueur), vue pleine

en noir, grandeur nature; seconde coupe, semblable mais évidée montrant

la paroi interne et les assises placentaires. Ces vues obtenues par encrage

et impression des coupes, au besoin corrigée par de fines retouches au

pinceau ou à la plume, montrent sommairement la paroi interne et les

attaches placentaires. Ces vues sont orientées de façon à ce que le côté

correspondant au labelle ou face adaxiale soit vers le bas; celui qui corres¬

pond au sépale médian et à la bractée ou face abaxiale est tourné vers le

haut. Le carpogramme peut en outre comporter la longueur du pédoncule

du fruit en millimètres, la longueur du fruit proprement dit, enfin l’état du

couronnement du fruit où l’on peut observer soit des débris (D), soit un

périanthe plus ou moins bien conservé (P), soit une colonne entière persis¬

tante (C). La référence de l’échantillon complète le carpogramme.

Certaines coupes peuvent présenter le début de la déhiscence (28, 35,

87, 106); certaines données sont incomplètes, se rapportant à des fruits

mutilés ou non mesurés à temps; certaines anomalies sont dues à des

déformations (70, 86), à des inégalités de développement (74) ou à un

parasitisme possible (? 129). Certaines espèces sont représentées par plu¬

sieurs carpogrammes ce qui permet d’apprécier la constance des caractères

observés. Le stade de fruit plein bien charnu avant la déhiscence est recherché

comme étant le meilleur; cependant à ce stade le fruit est parfois très fragile

et ainsi malaisé à analyser (surtout chez les Physurinx : 122, 123, 124, 133).

Certains genres ont été écartés comme Oberonia et Phreatia, le fruit étant

trop petit pour être analysé sans un fort grossissement.

Nota : Les plus belles figures en couleur de fruit d’Orchidées que

nous connaissions, sont des espèces, principalement américaines, données

par Beer (1863); les plus gros fruits représentés en vue latérale appartien¬

nent aux genres Lælia (L. perrinii Batem. var. major Lindl., 42 mm de dia¬

mètre), Chysis (Ch. lævis Lindl., diam. 43 mm), Stanhopea (S. tigrina

Batem. var. superba Hort., diam. 45,5 mm) et Catlleya (C. galeotliana

Beer, diam. 46 mm).

87 espèces se rapportant à 45 genres fournissent une première série

de carpogrammes pour lesquels les notes complémentaires qui suivent sont

fournies.

Acanthephippium viiiense L.O. Williams (30) : diam. 15 mm; une coupe plus grosse

a déjà été figurée (N. Halle, 1977, p. 279); les dents par 1 ou 2 sur chaque côté

sont caractéristiques.

Source : MNHN, Paris

— 362 —

1 8 + 15+ P (MK 37756) 19

2 ♦ <1 7+14+ D (MK 28611

3 • Û 1+ 9+ P («K 33680)

34 + 19 + D

(MK 31026)

V5»5+12+P(MK 35298)

0,5 + 12 + D

'▼ ” (MK 25624)

^ «S i, 5 + 12 + D

*** (MK 37758)

24 + 20 + D

(MK 38068)

22^ ^ 1 +1 0+D(MK 32609)

23 • O 3,5+7+0 (MK 34542)

24® 0 3 + 9 + D (MK 32947)

6 0 mCt 3+15+P(MK 33669) 250 ôo+12+C (MK 33423)

7 4 + 16 + P(MK 32319) 2 Ç& Tÿ 0+ l 2+0 (MK 37948)

8 *02,5 + 15 + P (MK 28913) ..

|||A*| 14 + 36 + D 27^V ^3

9 ^ V (MK 33216) ▼

7 + 30 + P

(MK 32487)

1f , & ÊÊm 4 + 24 + P

▼ V (MK 37761) 28

11 • ô !»5 + 5 + P(MK 32292)

Ç!

7+35+0

(MK 32451)

13 + 15

♦ O

3+21+0

(MK 35566)

12 + 37 + D

(MK 28129)

15 + 24 + D

(MK 34720)

♦ O

13 + 29 + D

(MK 33671)

35 + 35 + P

(MK 33030)

2 + 40 + D

(MK 26339)

15 + P (MK 29980)

14 + 30 + 0

V (MK 32674)

8 + 36 + C

TJJ (MK 34721)

115 + 55 + D

(MK 31967)

20_+ 70 + D

(MK

31429)

PI. 5. — Carpogrammes d'Orchidées. — Les genres suivants sont représentés : 1-22, Bulbo-

phyllum; 23, 24, Eria; 25, 26, Earina; 27-29, Dipodium; 30, Acanthephippium ; 31, 32,

Chrysoglossum. — Pour les espèces, voir le texte. (MK = MacKee).

Source : MNHN, Paris

— 363 —

Anoeclochilus imilans Schltr. (133) : diam. 5,5 mm'; nouvelle localité : Ponérihouen,

pente N du Mt Ounda, 500 m.

Appendicula reflexa Blume (114) : diam. 2,5 mm.

Bulbophyllum aphanopetalum Schltr. (1,2) : diam. 5,5 et 5 mm.

B. atrorubens Schltr. (3) : diam. 4,5 mm ; nouv. loc. : Hte Tchamba, 150 m.

B. baladeanum J. J. Smith (4, 5) : diam. 7,5 et 11 mm; l’espèce est connue comme variable.

B. beichei F. M-uell. (6-8) : diam. 4-5 mm; nouv. loc. : Hienghène, Kavatch, 200 m.

B. christophersenii L.O. Williams (9) : diam. 10 mm (c/. p. 357).

B. compionii Rendle (10) : diam. 8 mm; Mt Mandjélia, 750 m; c’est la première localité

connue de cette rare espèce, le type étant sans loc. Fleur souhaitée pour icono¬

graphie.

B. corylhium N. Hallé (11) : diam. 3,5 mm (c/. p. 357).

B. hexarhopalos Schltr. (12) : diam. 9 mm; nouv. loc. : Koh, Ouen Ouai (E Table Unio).

B. longifiorum Thou. (13-15) : diam. 10-13 mm; nouv. loc. : col de Petchecara, versant

Dothio.

B. ngoyense Schltr. (16, 146); diam. 5,5 mm; nouv. loc. : SW Taom, 600 m.

B. paehyanthum Schltr. (17, 18) : diam. 15-20 mm.

B. paUidiflorum Schltr. (19) : diam. 5 mm.

B. polypodioides Schltr. (20-22) : diam. 6-7 mm; les six côtes sont bidentées de façon

caractéristique.

Calaitlhe langei F. Muell. (61-64) : diam. 7-9,5 mm.

C. triplicata (Willemet) Ames (65, 66) : diam. 9-12 mm.

Ceratostylis micrantha Schltr. (60) : diam. 2,2 mm.

Chamæanthus neocaledonicus (Rendle) N. Hallé (115) : diam. 5 mm.

Chrysoglossum neocaledonicum Schltr. (31, 32) : diam. 7-8,5 mm; nouv. loc. : Mt Koghi,

pente W, 700 m.

Cleisostoma montanum (J. J. Smith) Garay (109) : diam. 5 mm.

Clemalepislephium smilacifolium (Reichb. f.) N. Hallé (139) : diam. 6 mm.

Cœlogyne lycastoides F. Muell. & Krânzlin (134) : diam. max. 40-45 mm.

Corybas neocaledonicus (Schltr.) Schltr. (135, 136) : diam. 4 mm.

Cryploslylis arachniles (Blume) Hassk. (58) : diam. 3,5 mm, fruit probablement non

Dendrobium camptocentrum Schltr. (33-35) : diam. 7-9,5 mm; fruit jaunâtre à pédoncule

rose (leg. Bégaud).

D. cleisiogamum Schltr. (143) : diam. 6 mm.

D. finetianum Schltr. (36) : diam. 9 mm.

D. fracliflexum Finet (37, 141) : diam. 11,5-12 mm; fruit vert ou vert foncé brillant.

D. gracilicaule F. Muell. (38, 140) : diam. 13-17 mm; nouv. loc. : Ouéholle, 200 m {leg.

Bégaud).

D. macrophyllum A. Rich. (39, 40) : diam. 26 mm; 32917 {leg. Bégaud) provient de Vaté,

Nouvelles-Hébrides.

D. odoniochilum Reichb. f. (41-44) : diam. 7-10 mm; l’étude des labelles permet de dis¬

tinguer la forme A (41) du Mt Nakada, et la forme B (42) de la Plaine des Lacs

(cf. N. Hallé, 1977, p. 112 et 113).

D. oppositifolium (Krânzlin) N. Hallé (45, 46) : diam. 9-11 mm.

D. pectinaium Finet (47) : diam. 4 mm; fruit insuffisamment plein, peut atteindre 6 mm.

D. polvcladium Reichb. f. (48, 49) : diam. 7-8,5 mm; nouv. loc. : Yaté, Gouemba, 500 m

(48).

D. sarcochilus Finet (50) : diam. 14 mm; fruits jaune verdâtre.

D. sylvanum Reichb. f. (51) : diam. 5,5 mm; fruit insuffisamment plein; il peut atteindre

8,5 mm (N. Hallé, 1977, p. 145, fig. 13).

D. vandifolium Finet (52) : diam. 12,5 mm; le pédoncule, souvent long, peut atteindre

25 mm (N. Hallé, l.c., p. 56, fig. 5).

D. virotii Guillaumin (53, 142) : diam. 8-9 mm; nouv. loc. : Plaine des Lacs.

Diplocaulobium ouhinnæ (Schltr.) Krânzlin (54) : diam. 6,5 mm {cf. p. 359).

Dipodium punctatum (Smith) R. Br. var. squamatum (G. Forster) Finet ex Guillaumin

(27-29) : diam. 9-12,5 mm; les fins poils suturaux remarquables ne sont pas visibles

sur ces coupes.

Source : MNHN, Paris

— 364 —

m o 15 + 20 + p

^ (MK 28912)

Il + 31 + D

(MK 31608)

15 + 30 + D

(MK 33684)

• £\ 9 + 19 + D

V/ (MK 32285)

0 13 + 23 + P

(Ml

>ç>:

(MK 32265)

, 10 + 25 + D

(MK 32286)

47#0 5,5 + 10,5 +P ( MK 32334)

480 Q 7+52+OCMK 33263)

21 + 43 + D

(MK 33709)

11 + 12 + D

(MK 38036)

8 + 36 + C

(MK 32530)

^ MK 33653) 51^^10+11 +P (MK 31973)

15+34+0

(MK 33200)

3 "fr ( NH 6669)

30+21+D (MK 34770)

f. J 55^' rfW4+3 ° + D

21 + 40 + D (MacKee 32015)

(NH 7001)

• O

® O

(NH 7000)

5 + 13 + D

(Veilion 2557)

■•O

♦O

+Û

(MK 34392)

2 + 28 + D

(MK 33215)

(NH 6998)

58 * Û 1 + 15 + P (MK 32485)

^ jRh 59 0+ 9,5 + P(MK 32849)

f Ç?5 + 16 + D (MK 26361) 604<llj5 + 7j5 + D (MK 30959)

. 6. — Carpogrammes d'Orchidées. — Les genres suivants sont représentés : 33-53, Den¬

drobium; 54. Diplocaulobium; 55-57, Ephemcrantha; 58, Cryptostylis; 59, Glomera; 60,

Ceratostylis. — Pour les espèces, voir le texte. (MK = MacKee; NH = N. Hallé).

Source : MNHN, Paris

— 365 —

20+C(MK 29031)

Çj6+16+C(MK 32025)

«-» 5,5 + 17 + D

V^» (MK 32267)

>4 •© 7+ 20+P(MK 31975)

i5 ^ô

•*#Ô

*♦

‘W

,ÿ r

12 + 34 + D

| (MK 33006)

41 + 31 + D

(MK 31065)

7 + 24 + D

(MK 31424)

0 7 + 31 + D

(MK 33674)

10 + 23 + D

(MK 33743)

7 + 30 + P

(MK 33212)

6 + 29 + D

(MK 25291)

+ 40 + P

(MK 37921)

15 + 22 + P

(MK 37953)

17 + 23 + P

(MK 37762)

L2 + 32 + D

(MK 37764)

11 + 16 + P

(MK 32361)

16 + 22 + P

(V 2477)

•O

♦o

11* û 3+ 17

•♦O

♦O

4 A A 8 + 35 + C

(MK 35270)

10 + 23 + P

(MK 32392)

|Q|3+17+P(V 9.11.71)

? + 41 + ?

(MK 31427)

10 + 38 + C

(MK 31228)

? + 30 + C

(MK 32857)

11 + 38 +C

(MK 29389)

6 + 33 + C

(MK 33156)

*■*#»'( MK 29372)

, 7. — Carpogrammes d'Orchidées. — Les genres suivants sont représentés : 61-66, Calanthe;

67-70, Eulophia; 71-74. Geodorum; 75-81, Megastylis; 82-87, Phajus. — Pour les espèces,

voir le texte. (MK = MacKee; NH = N. Hallé; V = Veillon).

Source : MNHN, Paris

105 ^^5+6+ P (MK 28115)

17 + 42+C 1Q6 ^ £ £}4+ll+P(MK 30662)

91’

# 0 ;

#(MK 31832)

^ 10?TV 2+25+D (MK 37603)

14 + 40+C 10 ST V°- 5+22+<)(MK 33677)

33689)1090 jrt|2+ll + D tMK 31346)

W W 110#O (MH 6989)

14 + 39+0 1 ii^ o0j5 +?+? (MK 25312)

J(MK 31948) n 2 # O 0,5+1 2+D (MK 30908)

113# O 1 + 8 + D (MK 33711)

114*0 0,5+S,5+P(MK 30713)

1150 Q) 2+22+0 (MK 31676)

116#O (HH 7006)

117*0 (MH 7005)

1180ÔO+11+P (MK 35665)

119#O 0,5+9+P (MK 32313)

120# rj 0,5+6+P (MK 28925)

121# O0 + 9 + P (MK 32359)

12300 0+13+P (MK 32017)

123 ® O <NH 70<w)

124*0 1+H+ p <“< 371 * 77 >

125## l + 12+0( MK 31022)

126* Ol + 8 + D (MK 32223)

127* 0 0,5+7+D (MK 25650)

128# Ol + 8 + P(MK 24891)

129 • O l,5+8+P(MK 32287)

101* O 5,5 + 9,5+0(MK 28848 ) 130 ^*** 3+31+D(MK 31011)

10 2#O5+15+P(MK 32 0 18) 00

103#Ô(’™7 l 32 * O (HH 7002)

104^T Û (NH 7007) 133^ 02+17+P (MK 33883)

4 + 16 + D

(MK 30250)

4 + 16 + D

(MK 31347)

4 + 14 + D

(MK 33672)

94^ fjj 8+7+D (MK 31237)

95# O 2 + 10+P (MK 31722)

96-0^ 6+16+P(MK 34619)

•o

(NH 7008)

2,5 +33+i

(MK 33929)

13 + 20 + P

W uy (MK 31032)

100^ V 13+11+P(MK 35300)

PI. 8. — Carpogrammes d’Orchidées. — Les genres suivants sont représentés : 88-90, Phajus,

91-93. Pholidota; 94-100, Liparis; 101-103, Malaxis; 104, Pterostylis; 105, 106, Nervilia;

107, 108, Trachoma; 109, Cleisostoma; 110-113, Drymoanthus; 114, Appendicula; 115,

Chanueanthus; 116, 117, Tæniophyllum; 118, Pachyplectron; 119, Gonatostylis; 120,

Goodyera; 121, Hetæria; 122, Moerenhoutia; 123, Pristiglottis; 124, Zeuxine; 125-129,

Microtatorchis; 130, Tropidia; 131, Earina; 132, Sarchochilus; 133, Anoectochilus. — Pour

les espèces, voir le texte. (MK = MacKee; NH = N. Hallé).

Source : MNHN, Paris

— 367 —

1350ÔO+12+D (MK 35447) 143 ® O 11 +14 +P (MK 36944)

136% O 0 + 13+D (MK 37197) 144 % Q 1 +26+D (MK 36139)

PI. 9. — Carpogrammes d'Orchidées. — Les genres suivants sont représentés : 134, Calogyne;

135, 136, Corybas; 137, Spiranthcs; 138, Thelymitra; 139, Clematepistephium; 140-143,

Dendrobium; 144, Tæniophyllum; 145, Pterostylis; 146. Bulbophyllum. — Pour les espèces,

voir le texte. (MK = MacKee).

Drymoanthus minimus (Schltr.) Garay (110-113) : diam. 3,5-4 mm; nouv. loc. : Dumbéa,

baie de Koutio-Kouéta.

Earina deplanchei Reichb. f. (131 bis) : diam. 5 mm; nouv. loc. : Mt Nakada.

E. floripecten Kranzlin (25, 26) : diam. 6 mm; nouv. loc. : Kouaoua, Ménazi, contrefort

N, 500 m (25); Ouazangou, plateau 800 m (26).

E. valida Reichb. f. (131) : diam. 3,5 (non tout à fait plein); nouv. loc. : Mt Nakada,

950 m.

Ephemerantha eomata (Blume) Hunt & Summerh. (55-57) : diam. 12-16 mm.

Éria æridostachya Reichb. f. ex Lindl. (23) : diam. 2,5 mm.

E. karicouyensis Schltr. (24) : diam. 3,5 mm.

Eulophia moraiii N. Hallé (69, 70) : diam. 13 mm.

Eulophia pulchra (Thouars) Lindl. (67, 68) : diam. 12-13 mm; nouv. loc. : Hienghène,

Kavatch, 200 m (68).

Geodorum pictum Lindl. (71-74) : diam. (11-) 17-22 mm; nouv. loc. : Poum, Nomatch,

20 m.

Glomera macdonaldii (Schltr.) Ames (59) : diam. 5 mm.

Gonatostylis vieillardii (Reichb. f.) Schltr. (119) : diam. 3 mm.

Goodyera scripta (Reichb. f.) Schltr. (120) : diam. 3 mm.

Hetæria discoidea (Reichb. f.) Schltr. (121) : diam. 3 mm (peut atteindre 4 mm).

Liparis gibbosa Finet (94) ; diam. 4 mm (peut atteindre 5 mm).

L. indifférons J. J. Smith (95) : diam. 4-4,5 mm.

L. taxa Schltr. (96) : diam. 6,5-7 mm; nouv. loc. : île Ouen, baie Iré.

L. layardii F. Mue». (97-99) : diam. 8-10 mm; nouv. loc. : Mt Nakada, 900-950 m.

L. phalacrocorax N. Hallé (100) : diam. 4 mm; nouv. loc. : Mt Pembai, 800 m (leg.

F. Hugeaud).

Malaxis taurina (Reichb. f.) Kuntze (101-103) : diam. 4-6,5 mm.

Megastylis gigas (Reichb. f.) Schltr. (75, 76) : diam. 12 mm.

M. glandulosa (Schltr.) Schltr. (77, 78) : diam. 7-11 mm; nouv. loc. : Mt Ignambi, versant

W, 1000 m.

Source : MNHN, Paris

— 368 —

M. moniana (Schltr.) Schltr. (79, 80) : diam. 9-11 mm.

M. rara (Schltr.) Schltr. (81) : diam. 5,5 mm.

Microlalorchis oreophila Schltr. (128, 129) : diam. 4 mm (128), le second fruit est peut-

être renflé pour une raison anormale (129).

M. schlechieri Garay (125-127) : diam. 2,5-4 mm.

Moerenhoulia grandiflora (Schltr.) Schltr. (122) : diam. 5 mm.

Nervilia aragoana Gaudich. (105, 106) : diam. 6 mm.

Pachypleclron neocaledonicum Schltr. (118) : diam. 5 mm.

Phajus dænikeri Krânzlin (82) : diam. 12-13 mm.

P. neocaledonicus Rendle (83) : diam. 10 mm.

P. roberlsii F. Muell. (84-87) : diam. 9-15 mm.

P. lancarvilleæ (Banks ex L’Hér.) Blume (88-90) : diam. 17 mm.

Pholidota pallida Lindl. (91-93) : diam. 9,5-10,5 mm; le fruit est hexagonal, les 6 côtes

sont bien saillantes contrairement à l'ovaire; nouv. loc. : Hienghène, Kavatch,

200 m.

Prisliglollis moniana (Schltr.) Cretz & J.J. Smith (123) : diam. 6 mm; nouv. Ioc. : Mt

Nakada, 950 m.

Pieroslylis bureaviana Schltr. (145) ; diam. 7 mm; nouv. loc. : Kouaoua, Dahi, 500 m.

P. ophioglossa R. Br. (104) : diam. 7 mm (peut atteindre 9 mm); nouv. loc. : Mt Nakada,

pente S, 900 m.

Sarcochilus rarus Schltr. (132) : diam. 4 mm (pour une longueur d'environ 6 cm; fruit

subsessile).

Spiranthes sinensis (Pers.) Ames (137) : diam. 2,7 mm.

Tæniophyllum fasciola (G. Forster) Reichb. f. (177, 144) : diam. 4-5 mm; nouv. loc. :

Port Boisé (117) et Cap Reine Charlotte (144).

T. trachypus Schltr. (116) : diam. 3 mm; nouv. loc. : Mt Nakada, 900 m.

Thelymitra longifolia J. R. & G. Forster (138) : diam. 5,2 mm.

Trachoma subluteum (Rupp) Garay (107, 108); diam. 4,5-5 mm; nouv. loc. : Hienghène,

Kavatch, 200 m (108); Thio, Kouaré, 300 m (107).

Tropidia viridifusca Krânzlin (130) : diam. 8 mm.

Zeuxine francii Schltr. (124) : diam. 4 mm; nouv. loc. : Hte Yaté, Riv. Bleue, 150 m.

Bibliographie

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Wien : 44 p .,fig. et 12 tab. chromolithogr.

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d'Hisl. nat. appl. 2 (5) : 152-160.

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218 tab.

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1003, 4 fig.

Jacquet, P., 1980. — Les Orchidées de la Nouvelle-Calédonie, L'Orchidophile 41 : 1508-

1513, 17 fig. couleur.

Krânzlin, F., 1910. — Orchidaceæ, Monandreæ, Dendrobiinæ, part. 1, in Engler,

Das Pflanzenreich IV, Heft. 45, 382 p.

Schlechter, R., 1906. — In Engler, Bot. Jahrbucher 39 : 69 (1906).

Source : MNHN, Paris

STUDIES IN CYFERACEÆ. — XIX. NOVELTY IN LIPOCARPHA :

L. RAYNALEANA AND ITS VEGETATIVE ANATOMY

E. Govindarajalu

Govindarajalu, E. — 27.05.1981. Studies in Cyperaceæ. — XIX. Novelty in

Lipocarpha : L. raynaleana and its végétative anatomy, Adansonia, ser. 2,

20 (4) : 369-375. Paris. ISSN 0001-804X.

Abstract : One set of collections without a name is named commemorating

Dr. J. Raynal, described and illustrated. The végétative anatomy of this

new taxon is also described and compared with that of its presumed relative

L. sphacelata. Both anatomical and taxonomical keys including this novelty

are presented for the identification of ail the South Indian species.

Résumé : Une nouvelle espèce de Lipocarpha, dédiée à Jean Raynal, est décrite

et illustrée. Son anatomie végétative est décrite et comparée à celle de L. sphace¬

lata, dont elle est supposée affine. Des clés taxonomique et anatomique per¬

mettent la détermination des 3 espèces désormais reconnues dans le Sud de

l’Inde.

E. Govindarajalu, Department of Botany, Presidency College, Madras-600.005,

south India.

Lipocarpha raynaleana Govindarajalu, sp. nov. — PI. I.

Herbæ annuæ. Radices aliquanto crasste, purpureo fusceæ. Culmi glauco-virides ( ubi

novi), post demum brunnei evadentes, fasciculati, plerumque recurvati (oblique erecti),

rigidi, subteretes, lævi,foliati ad basim, (2.5-) 5-15 (-20) cm x 0.8-1.0 mm. Folia linearia,

culmo æquilonga vel leviter longiora, rigida, stepe curvata, involuta, canaliculata, acuta,

glauco-viridia (ubi novi), post demum brunnea evadentes, eligulata, lævia per totum vel

ad apicem minute scabrida, 1-2 mm lata ; vaginæ infirme 1-2 pallide brunneæ (stramineæ)

membranaceæ, multinerviæ, latte, subacutæ cum margine hyalino. Inflorescentia capitata,

3-4-spiculata, spiculis confertim disposais, 8-15 x 10-15 mm. Bracteæ involucrales 2-3,

inæquales, plerumque recurvatte (patentes vel oblique erectæ), basi dilatatæ, foliiformes,

pluries longiores quant inflorescentiæ, bractæ longissimæ usque ad 13 cm longæ. Spicutæ

oblongo-ovatæ, teretes, obtusæ conicales, sessiles, spiculæ centrales 8-10 X 5-6 mm ; spi-

culte latérales 6-8 x 4-5 mm. Glumæ laie spathulatæ, carinatte, apice subcucullatæ, persis-

tentes, spiraliter dispositæ, dense imbricatæ, prominenter dilatatæ ad apicem, plerumque

apice incurvatæ, aliquantum crassæ, coriaceæ, tannin punctatæ, in medio valde trinerviæ

cum 3-4 nervis lateralibus validis utroque latere, 2.5-3.0 X 1.5-1.8 mm, nervo mediano

excurrenti in prominentem mucronem, mucrone 0.5-0.6 mm longo. Squamellæ (scalæ

hypogynæ) 2, ellipticæ, obtusæ vel acutæ, membranacæ, valde 3-7-nervatæ, hyalinæ, glumis

fere æquilongæ, 2.0 X 1.5-2.0 mm. Stamina 1-2, antheris elliptico-oblongis, apiculatis,

minutissimis, 0.5 mm longis. Stylus 0.5-0.8 mm longus ; stigmata 3, stylo æquilonga. Nux

anguste elliptica vel elliptico-ovata, recta, triquetra cum lateralibus depressis, sessilis,

distincte rostrata, dense granulata, lævis, atrobrunnea, longitudine j squamellæ æquantia,

1.5 X 0.5-0.6 mm; cellulæ extimæ epicarpicæ subhexagonales, utroque latere regulariter

dispositæ.

Type : Govindarajalu 14948, Padappai, Chenglepet Dt., Tamilnadu (Madras State)

(holo-, PCM; iso-, CAL, MH, BSI, BLAT, DD, PCM).

Paratypes : Govindarajalu 13890, Padappai, Chenglepet Dt., Tamilnadu (Madras

State), PCM; Venugopalan 156, ibid., PCM.

Source : MNHN, Paris

— 370 —

Note : This novelty is named after my friend, the famous Cyperologist

Dr. J. Raynal, Laboratoire de Phanérogamie, Muséum, Paris, who lost

his life for the cause of science during his scientific pursuit of plant collection

in Niger.

This species grows on the bunds of paddy fields. This new taxon is

related to Lipocarpha sphacelala (Vahl) Kunth but differs in having usually

recurved or obliquely erect culms, usually curved leaves as long as or

longer than culms, larger central and latéral spikelets, pale or colorless

characteristically persistent slightly larger broadly spathulate many nerved

glumes with strong médian nerve excurrent into prominent mucro, squa-

mellæ shorter than glumes, straight larger dark brown elliptic or elliptic

ovate nuts with depressed concave sides and nuts shorter than squamellæ.

ANATOMY OF LIPOCARPHA RAYNALEANA

Methods and for other information, see Govindarajalu (1966; 1968

a, b; 1974).

LEAF. Abaxial surface : Intercostal cells short, variable in size, hexa¬

gonal, moderately thick-walled, smooth; end walls straight. Stomata (L.

31.5-36.0 nm; W. 31.5 |xm), broadly elliptic, moderately thick-walled;

subsidiary cells parallel-sided or low dome-shaped (PI. 2, E ); guard cells

extended; interstomatal cells short with concave ends. Silica-cells short,

broad, thin-walled, each cell containing (1) 2-3 conical silica-bodies with

satellites occuring in a single continuous row (PI. 2, F).

Adaxial surface: Silica-cells occurring in 1-2 continuous rows in the

submarginal régions. Stomata absent. Other details, see abaxial surface.

Lamina , transverse section : Outline crescentiform or broadly U shaped

without midrib (PI. 2, C ). Specimen examined c. 2.0-2.1 mm wide. Hypo-

dermis adaxial 4-5 cells thick; abaxial just 1 layer of cells in thickness.

Adaxial epidermal cells larger than those of the abaxial. Margins abruptly

acute, upcurved, pointed (PI. 2, C). Sclerenchyma c. 15 small abaxial

strands opposite to some but by no means ail vb’s; c. 4 adaxial strands

(Ht. 45 txm; W. 54 nm) near each leaf margin pentangular and rectangular

(PI. 2, C, D)\ abaxial usually trapezoid (PI. 2, C, D) but sometimes penta¬

gonal (Ht. 27.0 nm; W. 31.5 nm). Bulliform cells absent. Air-cavities

occurring in between few vb’s (PI. 2, C) and containing lobed parenchyma

cells. Stomata in level with or slightly raised above the surface; guard

cells with outer ledges only; substomatal chamber narrow and small.

Vascular bundles c. 33 in number arranged in crescentiform row; c. 4 of

them larger and slightly more adaxial than the remainder (PI. 2, C); medium

size vb’s c. 3 in number; large and medium size vb’s oval-shaped belonging

to type III A (Cheadle & Uhl, 1948 a); small vb’s circular in outline of

type I (Cheadle & Uhl, 1948 a); ail arranged without any regular alterna¬

tion; large and medium size vb’s containing protoxylem lacunæ; metaxylem

Source : MNHN, Paris

— 371 —

Source : MNHN, Paris

— 372 —

vessel members (D. c. 22.5 nm in diameter); metaphloem of “ regular type ”

(Cheadle & Uhl, 1948 b). Bundle sheaths of ail vb’s 2-Iayered, complété;

I.S. parenchymatous, O.S. fibrous (PI. 2, D). Assimilatory tissue : chlo¬

renchyma radiating (PI. 2, D). Secretory cells not common.

culm. Epidermis, surface view: Cells elongated, moderately thick-

walled, smooth, more or less hexagonal; end walls straight. Stomata (L. 49.5-

54.0 nm; W. 22.5-27.0 i^m), oblong elliptic, thick-walled; subsidiary cells

parallel-sided. Silica-cells short, broad, thin-walled, occurring in a single

discontinuons row; each cell containing usually 2 conical silica-bodies

with satellites.

Transverse section: Outline circular (PI. 2, A); specimens examined

c. 1.5 mm in diameter. Central ground tissue solid, parenchymatous

the cells of which polygonal, thin-walled with intercellular spaces. Epi¬

dermis consisting of radially elongated moderately thick-walled cells.

Cuticle thick, lamellated (c. 4.5 nm thick). Stomata slightly raised above

the surface; guard cells with outer ledges; substomatal chamber narrow

and small. Assimilatory tissue: chlorenchyma conspicuously radiating

around the vb’s of outer ring (PI. 2, B); radiating chlorenchyma reduced

forming a cap at the phloem pôle of inner large vb’s (PI. 2, B). Vascular

bundles arranged in two rings: peripheral ring consisting of c. 41 small

vb’s of type I (Cheadle & Uhl, 1948 a) and circular in outline; vb’s c. 10

in number, oval-shaped of type III A (Cheadle & Uhl, 1948 a) and possess-

ing protoxylem lacunæ. Metaxylem vessel members (D. c. 18.0 nm in

diameter); metaphloem of “ regular type ” (Cheadle & Uhl, 1948 b).

Bundle sheath 2-layered : O.S. fibrous, I.S. parenchymatous, both com¬

plété in ail small vb’s but I.S. incomplète in larger vb’s (PI. 2, B). Scleren-

chyma : hypodermal strands conspicuous, variable in size and shape,

mostly pulviniform with angular sides (PI. 2, B), sometimes rounded (Ht.

31.5-45.0 |im; W. 45.0-67.5 nm); circumvascular sclerenchyma of inner

vb’s 1-3-layered forming crescentiform caps at xylem pôles. Air-cavities

absent. Secretory cells not seen.

root. Transverse section: Diameter of the root examined 0.6 mm.

Exodermis consisting of 1-2 layer of cells; cells variable in size and shape

with moderately suberized cell walls. Cortex lacunose with concentrically

arranged air-cavities separated from the contiguous ones by radiating

rows of parenchyma cells. Endodermis: cells elliptic ovate with uniform

thickenings ail around and fairly large lumina. Pericycle consisting of

a single layer of thick-walled cells. Metaxylem éléments central occurring

in pairs, oval in outline (D. 27-31.5 nm in diameter); protoxylem units 9,

alternating with as many metaphloem units; each metaphloem unit contain¬

ing 1-2 sieve tube éléments and 2-4 companion cells. Central ground

tissue made up of thick-walled cells.

Materials examined : Govindarajalu 14948 and 13890, Padappai, Chenglepet

Dt., Tamilnadu (Madras State), PCM; Venugopalan 156, ibid., PCM.

Source : MNHN, Paris

— 373 —

PI. 2. — Lipocarpha raynaleana Govindarajalu : A, transection of culm, ground plan x 22;

B, transection of a portion of culm x 130; C, transection of lamina, ground plan x 22;

D, transection of lamina margin x 66; E, surface view of abaxial epidermis showing

stomata X 170; F, surface view of costal epidermal cells showing silica-bodies x 170.

Source : MNHN, Paris

— 374 —

Anatomically Lipocarpha raynaleana is distinguished from L. spha-

celata (Govindarajalu, 1974) in the following respects.

leaf : intercostal, interstomatal cells and stomata shorter, silica-

cells thin-walled each one of them containing 2-3 cone-shaped silica-bodies

with satellites in the abaxial surface, silica-cells in the adaxial surface

restricted only to the submarginal régions only, 2-layered bundle sheaths,

abaxial sclerenchyma absent, pentangular and rectangular adaxial scleren-

chyma strands in the submarginal régions, metaphloem of “ regular type ”,

air-cavities fewer than vb’s containing lobed parenchyma cells.

culm : epidermal cells elongated, stomata shorter with parallel-

sided subsidiary cells, silica-cells in a single discontinuous row each cell

possessing usually 2 silica-bodies, central ground tissue solid, parenchyma-

tous, larger number of vb’s, sclerenchyma strands variable in size, shape

mostly pulviniform with angular sides, inner sheath parenchymatous,

outer sheath fibrous, air-cavities absent.

root : endodermal cells elliptic ovate, metaxylem vessel members

central occurring in pairs, metaphloem distinctly recognizable.

Taxonomical key

1. Glumes deciduous; nuts with convex or flat sides.

2. Glumes pale or fuscous, spathulate-oblanceolate with triangular apex;

nut narrowly oblong obovate much shorter than squamellæ... L. chinensis

2’. Glumes dark purple or purple dotted, narrowly cuneate, oblong

obovate with abruptly acute apex; nut narrowly oblong, as long

as squamellæ . L. sphacelaia

1’. Glumes persistent, broadly spathulate with triangular prominent mucro;

nut narrowly elliptic or elliptic ovate with depressed sides, J the length

of squamellæ. L. raynaleana

Anatomical key based on characters visible

IN SURFACE VIEW AND TRANSECTIONS OF LEAF

1. Interstomatal cells short; bundle sheaths double.

2. Vascular bundles 41-43 in number; air-cavities as many as vb’s, each

containing stellate perenchyma . L. chinensis

2’. Vascular bundles c. 33 in number; air-cavities fewer than vb’s, each

containing lobed parenchyma . L. raynaleana

1’. Interstomatal cells axially elongated; bundle sheaths single. L. sphacelaia

Key to letterings and abbreviations used in text

AB.E., abaxial epidermis

A.C., air-cavity

AD.E., adaxial epidermis

CH., chlorenchyma

CU., cuticle

C.V.S., circumvascular sclerenchyma

S.C., subsidiary cell

S.S., sclerenchyma strand

ST., stoma

V.B., vascular bundle

XY., metaxylem

Source : MNHN, Paris

— 375 —

E., epidermis

D., diameter

Ht., height

L., length

G.C., guard cell

HY., hypodermis

I.S., inner sheath

O.S., outer sheath

PH., metaphloem

SA., satellite

vb, vascular bundle (pl. vb’s)

W., width

S.B., silica body

Bibliographie

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ledoneæ and their relations to the Iate metaxylem conducting éléments. Amer. J. Bot.

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bostylis Kunth, J. Linn. Soc. (Bot.) 59 : 289-304.

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Rottb., J. Linn. Soc. (Bot.) 62 : 27-40.

Govindarajalu, E., 1968 b. — Systematic anatomy of south Indian Cyperaceæ; Cyperus

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Cyperus L. subgen. Juncellus, Cyperus subgen. Mariscus and Lipocarpha R. Br.,

J. Linn. Soc. (Bot.) 68 : 235-266.

Source : MNHN, Paris

Source : MMHN, Paris

NOTE SUR LES GRAMINÉES DE LA NOUVELLE-CALÉDONIE.

VI : LEPTUROPETIUM, GENRE NOUVEAU ENDÉMIQUE

Ph. Morat

Morat, Ph. — 27.05.1981. Note sur les Graminées de la Nouvelle-Calédonie.

VI : Lepturopetium, genre nouveau endémique, Adansonia, ser. 2, 20 (4) :

377-381. Paris. ISSN 0001-804X.

Résumé : Description d’un nouveau genre de Graminées, Lepturopetium,

appartenant à la tribu des Chlorideæ et voisin des Leptureæ. Il renferme une

espèce : L. kuniense Morat.

Abstract : A new grass genus, Lepturopetium, is described. It belongs to the

Chlorideæ but approches also the Leptureæ. The single species is L. kuniense

Morat.

Philippe Morat, Laboratoire de Botanique, Centre ORSTOM, B.P. AS, Nouméa

Cedex, Nouvelle-Calédonie.

Étant donnée la banalité maintes fois soulignée de la famille des

Graminées en Nouvelle-Calédonie, la mise en évidence d’une espèce nou¬

velle appartenant à cette famille est loin d’être un fait divers. Mais quand

cette espèce ne peut être attribuée à aucun genre connu, le phénomène devient

franchement surprenant. Une telle découverte montre d’une part que

l’exploration botanique de ce Territoire est loin d’être achevée, et d’autre

part que la flore des Graminées n’est peut-être pas aussi banale qu’on le

suppose.

Dans l’herbier du Centre ORSTOM de Nouméa (NOU) existe un

échantillon en provenance de l’île des Pins qui ressemble au premier abord

étrangement à un Lepturus. A l’analyse, il se révèle posséder simultanément

des caractères si particuliers qu’ils justifient la création d’un nouveau

genre, dont la diagnose s’établit comme suit :

LEPTUROPETIUM Morat, gen. nov.

Genus novum Chloridearum Oropetio Trin. sensu lato affine, a quo habitu prostrato

deinde adscendente haud pulvinato Lepturum R. Br. maxime simulante, inflorescentia

maturitate non disrupta, pluma inferiore floris inferioris bene evoluta uninervia, lemmate

aristatoque recedit.

Herbe rampante puis ascendante. Inflorescence en épi distique, ter¬

minal, unique, linéaire, cylindrique, ne se désarticulant pas à maturité.

Epillets adaxiaux, biflores et partiellement enfouis alternativement

dans des cavités situées de part et d’autre du rachis. Fleur inférieure fertile

avec glume inférieure bien développée et vascularisée et lemma aristée.

Fleur supérieure stérile portée par une rachéole.

Source : MNHN, Paris

— 378 —

Espèce type : Lepturopetium kuniense Morat, sp. nov. 1

Herba perennis prostrata deinde adscendens, 30-50 cm attingens. Foliorum laminæ

lineares, 5-7 cm longs, 3-4 mm latte. Ligulæ membranaces breviter ciliolatæ. Inflorescentia

spica unica terminali cylindrica 5-7 cm longa, maturitate non disrupta. Spiculs biflorte lanceo-

lats acutæ, 6-7 cm longs, adaxiales, distichæ, partim in cavitatibus alternatim utroque

latere rhachidis dispositis infosss. Gluma inferior bene evoluta, uninervia, 2,5-4,5 cm longa

(in spicula terminali eadem ac gluma superior). Gluma superior acuta, coriacea, 5-7-nervia,

spiculam æquans.

Flos inferior hermaphroditicus, lemmate papyraceo involventi 5-6 mm longo, trinervio,

apice subbifido, aristam 1,5-5 mm longam gerenti. Palea 4-5 mm longa, hyalina, binervia,

bicarenata, ovarium bifidum, très stamina 1 mm longa duasque lodiculas redactas includens.

Semen deest.

Flos superior semper præsens, sterilis, rhacheola pilosa, redactus ad lemma unicum,

inane, subbifidum, mucronatum.

Type : Schmid 2103, prairie ombragée en bordure de mer, sur sables calcaires

reposant sur fond rocheux. Ile des Pins, vers la Baie de Kumo, juin 1967 (holo-, PI;

iso-, NOU !).

Herbe pérenne à tige grêle couchée, s’enracinant aux nœuds. Souche

réduite avec quelques restes de vieilles gaines à la base, entourant les bour¬

geons de remplacement; chaume genouillé, ascendant, parfois ramifié,

atteignant 30-50 cm de hauteur. Feuilles munies de longs poils au sommet

des gaines, ornementation se retrouvant à la base des limbes sur la face

interne. Limbe linéaire, atteignant 5-7 cm de longueur et 3-4 mm de lar¬

geur. Ligule membraneuse courte, ciliolée au sommet.

Inflorescence en épi terminal unique, cylindrique, long de 5-7 cm,

de couleur paille ou rose violacé, dont la base reste cachée dans la dernière

feuille à l’anthèse et ne se découvre que tardivement. Rachis légèrement

flexueux, aplati, continu, ne se désarticulant pas.

Épillets biflores, lancéolés, aigus, long de 6-7 mm, alternes, en position

adaxiale, à insertion distique et partiellement enfouis dans des cavités

situées sur les faces opposées du rachis. Glume inférieure bien développée,

hyaline, uninerviée, longue de 2,5 à 4,5 mm, étroitement appliquée à la paroi

de la cavité du rachis, identique à la supérieure dans l’épillet terminal.

Glume supérieure aiguë, coriace, rigide, de la taille de l’épillet, arrondie

sur le dos, à marges membraneuses, 5-7-nerviée.

Fleur inférieure hermaphrodite, sessile, à callus pileux. Lemma papy-

racée, avec une courte pilosité sur la face externe enveloppante; 5-6 mm

de longueur, trinerviée, légèrement bifide au sommet d’où part une arête

scabre longue de 1,5-4,5 mm. Palea longue de 4 mm, hyaline, binerviée,

bicarennée, à sommet tronqué cilié, renfermant un ovaire bifide, 3 étamines

jaunes longues de 1 mm et 2 lodicules réduits. Graine non vue.

Fleur supérieure constante, stérile, portée par une rachéole, longue de

1,2 mm, légèrement pubescente, et représentée par une seule lemma tri¬

nerviée, vide, légèrement bifide au sommet et mucronée au sinus.

I. De Kunié ancien nom de l'ile des Pins.

Source : MNHN, Paris

— 379

Source : MNHN, Paris

— 380 —

Cette espèce n'est connue que par son type. Malgré des recherches,

elle n’a encore jamais pu être retrouvée. Sans doute est-ce une espèce

rare ou tout au moins très étroitement localisée. L’imprécision de son lieu

de récolte jointe à la très grande ressemblance qu’elle présente avec d’autres

espèces courantes comme Lepturus repens (Forst.) R. Br. et Stenotaphrum

micranthum (Desv.) Hubb. ex Hubb. & Vaughan, qui précisément croissent

dans le même biotope, expliquent qu’on ne l’ait pas encore retrouvée.

Malgré la convergence étonnante dans le port et l’inflorescence que

présente cette espèce avec le genre Lepturus R. Br., elle n’appartient pas

à ce dernier genre ni même à la tribu des Leptureæ du fait de son rachis

inarticulé, de sa glume inférieure bien développée et vascularisée et de sa

lemma aristée.

Par contre ce sont là des caractères de Chlorideæ, encore renforcés par

la présence constante de 2 fleurs dans ses épillets, la deuxième étant portée

par une rachéole allongée. De plus, l’inflorescence bien que distique pré¬

sente en section transversale une dissymétrie (PI. 1, II) — amorce d’une

structure unilatérale de l’inflorescence — tendant à repousser d’un seul

côté l’insertion des épillets sur le rachis.

Elle ne peut cependant être assimilée au genre Oropetium Trin. qui

présente une inflorescence similaire (cas rare chez les Chlorideæ) même

si ce dernier genre est pris dans le sens le plus large de Pilger (1954), repris

par Gillet & Quézel (1959) puis par Clayton, Phillips & Renvoize

(1974), c’est-à-dire en incluant les anciens genres Lepturella Stapf, Chætosti-

chium C. E. Hubb. et surtout Kralikia Coss. & Dur., avec lequel elle pré¬

sente bon nombre de caractères communs tels que : épillets biflores, callus

poilu, rachéole portant la deuxième fleur, glume inférieure présente (mais

réduite chez Kralikia) et étroitement appliquée à la paroi de la cavité du

rachis.

Mais tous les Oropetium connus, même au sens large, sont des plantes

cespiteuses de 5-15 cm de hauteur et poussant en coussinets plus ou moins

denses. Ils n’ont en aucun cas le port rampant puis ascendant, le développe¬

ment de l’appareil foliaire du Lepturopetium. En outre la présence ici

d’une glume inférieure vascularisée et toujours bien développée (parfois

jusqu’à la moitié ou au 2 /3 de l’épillet), d’une glume supérieure à 5-7 ner¬

vures (au lieu de 1-3 chez Oropetium) ainsi que la présence d’une arête

manifeste sur la lemma fertile 1 , existant encore sous forme de mucron sur

la lemma supérieure stérile, confirme la valeur du genre Lepturopetium et

son appartenance aux Chlorideæ.

Voisin, mais distinct des Oropetium, il se rapproche beaucoup des

Lepturus par son appareil végétatif, l’allure générale de son inflorescence et

la glume supérieure de ses épillets.

1. Ce caractère se retrouve chez Lepturella aristata Stapf, mais sans les autres particu¬

larités déjà mentionnées (épillets biflores, rachis non désarticulé, port rampant, etc...).

Source : MNHN, Paris

— 381 —

Bibliographie

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Bosser, J., 1969. — Graminées des pâturages et des cultures à Madagascar, Mémoire

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Clayton, W. D., Phillips, S. M. & Renvoize, S. A., 1974. — Gramineæ, Part 2, Flora

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Gillet, H. & Quezel, P., 1959. — Le genre Oropetium Trin. en Afrique française,

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Pilger, R., 1954. — Das System der Gramineæ, Bot. Jahrb. 76 (3) : 281-384.

Source : MNHN, Paris

Source : MMHN, Paris

DYNAMICS OF VEGETATIVE SHOOTS OF THREE SPECIES OF

AFRAMOMUM (ZINGIBERACEÆ) IN CAMEROON

S. H. Bullock

Bullock, S. H. — 27.05.1981. Dynamics of végétative shoots of three species

of Aframomum (Zingibîraceæ) in Cameroon, Adansonia, ser. 2, 20 (4) : 383-392.

Paris. ISSN 0001-804X.

Abstract : Demography of leafy shoots was monitored for a year in 3 Afra¬

momum species, rhizomatous herbs. Emergence rate of new shoots showed four

oscillations in one species but a single maximum in two species. Growth rates

were highest while the shoots were leafless, and declined steadily with increasing

height. Herbivory by primates may increase emergence and growth rates.

Ail species showed mortality precisely related to shoot âge, with maximum

shoot longevity in the range of 1.2-1.5 years. Diverse relationships of pheno-

logy to climate, and of végétative to sexual phenology, were shown in these

species and two other herbs of the same habitat.

Résumé : Une étude de population de rameaux feuillés a été faite pendant 1 an

sur 3 espèces A'Aframomum (herbes rhizomateuses). Dans une de ces espèces,

la répartition annuelle du taux d'apparition de nouveaux rameaux montre

quatre sommets, mais n'en montre qu'un seul chez les 2 autres. Les taux de

croissance sont les plus forts tandis que les rameaux sont encore aphylles, puis

décroissent régulièrement avec leur accroissement en hauteur. Les taux de

croissance et d'apparition des rameaux semblent accrus par leur consommation

par des Primates herbivores. Chez toutes ces espèces, la mortalité est en relation

précise avec l’âge du rameau, la longévité maximum d’un rameau étant de l’ordre

de 1,2-1,5 an. Chez ces espèces, et chez les 2 autres herbes partageant leur habitat,

on montre diverses relations entre la phénologie et le climat, et entre la phéno-

logie végétative et sexuelle.

Stephen H. Bullock, Botany Department, San Diego State University, San Diego,

California 92182, U.S.A.

Appearance, growth and death among the many units of a branched

plant are the focus of the démographie perspective on clonal growth (Har¬

per, 1978). The dynamics of some rhizomatous plants has been studied

in temperate habitats, but tropical counterparts hâve been illucidated only

from the architectural perspective (Bell, 1979; Hallé, 1979). Here I

report actuarial data on giant herbs of disturbed areas in équatorial forest.

In this setting important considérations include the strong seasonality of

rainfall, and herbivory by large mammals. Observations are presented on

turnover and growth rates within the standing crop of leaf-supporting

shoots, comparing three congeneric species at one site: Aframomum gigan-

teum K. Schum., A. hanburyi K. Schum., and A. subsericeum K. Schum.

(Zingiberaceæ).

GROWTH HABIT

Each sympodial unit of an Aframomum clone begins as a subterranean

latéral branch on another shoot. Each branch has a rhizomatous stage

Source : MNHN, Paris

— 384 —

of horizontal growth, but for most branches this lasts only a fevv internodes,

and these internodes are quite short. The branch then turns upward,

beginning the upright growth that is of concern here. On the shoot,

leafless sheaths to a height of about 1 m are followed by a close array of

distichous leaves. A 6 m shoot of A. giganteum may bear 43 leaves, and

a 3 m shoot of A. subsericeum may bear 30 leaves. These shoots are

strictly végétative, and of indeterminate growth though each species and

grove has a fairly well-defined maximum height, in the range of 2-6 m.

Death of the entire shoot may be rapid, or very slow with death of the

leaves in descending sequence.

Groves of some species are apparently structured by a bimodal ten-

dency in the length of the rhizome stage; e.g. in A. daniellii “ rameaux

traçants et non-tracants ” respectively hâve 11-15 and up to 70 + internodes

(Halle, 1979). A. giganteum and A. hanburyi groves both hâve super-

ficially uniform canopies but the stems arise in clumps. In one grove

of A. giganteum the highest variance in numbers of stems per plot occurred

at the smallest plot size, 0.0625 m 2 , indicating that stems “ clump ” most

strongly at that or a smaller scale. New clumps would be initiated by the

stems with a prolonged rhizome stage (number and /or length of internodes).

Other tactics of spatial disposition of shoots are known, A. polyanthum

lacking long branches, and A. afT. sulcatum lacking short branches (Halle,

1979).

Leafless flowering branches arise from the rhizomes, distal to végé¬

tative branches (Halle, 1979). The species difler in the structure and

size of the inflorescence. Pollination may be by sunbirds, and several

mammals, including four primate species, disperse the seeds.

SITE

The study area was near the Southern border of the United Republic

of Cameroon, Campo subdistrict, in the vicinity of Nkoelon village (2° 23' N,

10° 3' E; ca. 200 m elev.). Four seasons were defined by rainfall, there

being a 3-4 week drought about July, and a 3 months drought from Decem-

ber through February (Table 1). However, the number of rainless days

per 28-day period exceeded 14 days in 10 of 13 consecutive periods, and

12 % of the year’s rain fell in a single week in October. The soil of the

area is a ferralitic latosol. which supports “ Biafran Forest ”, a floristic

unit described by Letouzey (1968). Logging disturbance, 2-6 years

previous, amounted to 8.4 % of the area (Bullock, 1980), of which about

half was suitable for development of Aframomum groves.

SAMPLING

The three species studied were the most abundant of perhaps 10 species

of Aframomum occuring in the région, and were among the most common

of ail herbs along roadsides and in old fields. The species can be found

Source : MNHN, Paris

— 385 —

scattered through the forest, but différences in success in various micro-

habitats are as yet poorly defined.

The three species were studied for 8-12 months from July 1976-June

1977. Observations were made every four weeks on fixed plots. For

simplicity, dates are reported hère by day numbers; thus day 001, 1 January

1977, was near the midpoint of the study. The new shoots found and

given identification numbers each month are referred to below as the

emergence cohort for that month. (No seedlings appeared in the plots).

The emergence rate is the number of these new shoots divided by the number

of shoots living at the previous census. A mean emergence date for each

cohort is taken as two weeks prior to the first observation of the cohort.

The height of each shoot was recorded each month, and refers to the dis¬

tance from the center of a basal bulge of the stem to the ligule of the upper-

most, green, expanded leaf, or to the tip of the spike for shoots consisting

only of bladeless sheaths. The heights reported hère are mean heights

for cohorts or designated portions of cohorts: this includes the means at

âges of two and six weeks, and a “ standard maximum height ”. The

latter represents, for A. giganteum, the maximum height of the tallest

half of the early emergence cohorts; for A. hanburyi, it is the height of the

tallest half of the initial (mixed-age) cohort présent on the plots. Mortality

is considered for the entire population of each grove (new deaths divided

by the number of live shoots in the previous census), for âge classes of shoots

independent of emergence date, and for the initial populations of the plots.

Numbers of flowers and fruits in different stages were also noted.

Comparative notes on the phenology of other common herbs are presented

in the Discussion.

Ail the plots were associated with logging disturbances.

There were two plots of A. giganteum. Agi was 8 X 8 m with an

initial density of 2.4 shoots /m 2 , on level ground, with bulldozer-mounded

earth behind the plot, and no tree cover. This grove was advancing into a

stand of the shrub Stachytarpheta; dead shrubs and dead standing shoots

of A. giganteum were removed from the grove in early July 1976, and some

additional shoots were eut in late July, late August and mid-September.

Ag2 was 5 X 9 m with an initial density of 3.0 shoots/m 2 , on bulldozer-

mounded earth, with no tree cover.

Three plots of A. hanburyi were observed. Ahl was 5 X 3 m with

an initial density of 5.2 shoots/m 2 , aligned along the edge of an old dirt

road, with encroaching branches of Harungana madagcscariensis and

Macaranga sp., and morning shade from taller trees of Musanga cecro-

pioides. Ah2 was 5 x 2 m with an initial density of 6.0 shoots/m 2 , situated

on an old tractor trait, and one end of the plot was seasonally water-logged ;

the high tree canopy was half-closed. Ah3 was 5 x 2 m with an initial

density of 4.7 shoots/m 2 , situated on an old tractor trail, with partial shade

from saplings and a high, broken tree canopy.

A single grove of A. subsericeum was observed, beginning in Decem-

ber 1976, on a 3 x 4 m plot with an initial density of 7.1 shoots/m 2 , on

level ground, with a light canopy of Harungana.

Source : MNHN, Paris

— 386 —

RESULTS

Aframomum giganteum

In Agi, the highest emergence rate (.91 new shoots/old shoot/month)

followed initial clearing of standing dead shoots and dead shrubs from the

grove (Table 1). High emergence also followed the next cuttings, but the

rate of mid-October (.29) probably reflected the rainfall maximum as well.

The rate then declined and was lowest through the major dry season (.01-

.04), increasing again through May and June (.11, day 178). In Ag2,

TABLE 1 : EMERGENCE, GROWTH AND MORTALITY RATES

Emergence and mortality are for entire groves on given census days; growth (cm incré¬

ment in mean height) applies to the emergence cohort of the given day; (* Ahl only).

Rainfall totals (mm) are given for the four weeks preceding each census.

Census da

207 232 256 291

315 347 010 038 066 094

122

150 178

Agi

Emergence

.91

.27

.10

.29

.08

.04

.01 .04

.01

.03

.05

.08 .11

505

Growth 0-2 wks

129

86 59

102

46 49

503

2-6 wks

136

106

120

110

89 88

159

166

129 —

449

Death

.05

.08

.02

.04

.09

.12 .10

.07

.08

.07

.09 .10 215

Ag2

Emergence

.11

.06

.22

.29

.07 .03

.03

.06

.03

.05 .04 234

Growth 0-2 wks

106

92 45

107 108

191

2-6 wks

129

165

139

135

152

114 138

114

134

133

115 —

174

Death

.04

0 .04

.02

.04

.04 .03

Emergence

. 14

.04

.13

.11

.06

.05 .07

.11

.04

.10

.10 .09

188

Growth* 0-2 wks

143

120

114

84 103

92 98

113

2-6 wks

168

123

125 124

137

152

114

113 —

Death

.05

.09

.08

.07

.12

.04 .12

.06

.07

.14 .16 201

Emergence

.04 .07

.04

.05

.09

.06 .07

Growth 0-2 wks

48 53

45 34

2-6 wks

63 64

64 —

Death

.08 .06

.11

.04

.05

.07 .11

Rainfall

270 420

4 46

110

136

194 12

Source : MNHN, Paris

— 387 —

exact emergence rates could not be calculated as only shoots new during

the study were marked and monitored, so mortality among the pre-existing

shoots isn’t known. Nonetheless, the highest emergence rate was clearly

in the wettest month (ca. .29, Table 1). The rate declined through the

first half of the major dry season, not reaching a minimum until the February

census. Between February and late June there was no trend in emergence

rate.

The greatest incréments in shoot height were during the first six weeks

(Fig. 1, A ; Table 1). The mean height of shoots at the first observation

of any cohort ranged from 33 to 129 cm. The overall means among cohorts

for the first two weeks were 64 ± 27 cm for Agi and 83 ± 22 cm for Ag2.

The variation in this height did not reflect current rainfall, nor did the two

groves show parallel variation. In Agi, relatively slow growth was typical

(55 ± 14 cm, 11 cohorts) compared to other cohorts there (116 cm, 2 co¬

horts), and to both slow and fast-growing shoots in Ag2 (94 ± 13 cm,

7 cohorts and 142 ± 20 cm, 5 cohorts). The mean growth incrément for

the following month ranged from 72 to 165 cm for both groves (Table 1),

with averages of 114 ± 29 cm for Agi and 133 ± 16 cm for Ag2. This

incrément showed some tendency to be higher in cohorts emerging in wetter

months. The monthly incrément declined steadily for four or more

months (Fig. 1), becoming somewhat irregular after that, though close to

Source : MNHN, Paris

— 388 —

zéro. The standard maximum heights were 463 ± 63 cm for Agi (n = 70)

and 501 ± 22 cm for Ag2 (n = 25).

Excluding the October and November censuses, the mean natural

death rate in Agi over the year was .085/month (Table 1). There was

a marked minimum at the height of the wet season (.02-.04), and somewhat

higher than average values were recorded in January and February (.12

and . 10). In addition, there was mortality from cutting of .09 in August

and .05 in September. The exact rates could not be calculated for Ag2,

as with emergence, but the crude number of deaths among marked shoots

showed no trend from February through June.

The age-specific mortality in Agi was constant, as reflected by the

linear survivorship curve (Fig. 2, A), with a loss of .05 per month ( r 2 = .99,

Sb = .002). The régression predicts a half life of 10J months and that

ail the shoots would be dead before the 21 st month. Ag2 had high initial

survivorship, .987 for 0-8 months (r 2 = .97, Sb= .001), but there was a

dramatic change to a rate of .907 for âges 9-13 months (r 2 = .97, j» = .002;

Fig. 2, A). If the latter rate remained constant, the last shoots would

hâve died before 19 months âge.

Aframomum hanburyi

Emergence rate in A. hanburyi averaged .084 ± .03 between the

three groves over the whole study period. However, more or less regular

fluctuations occurred in the emergence rate; the timing in the three groves

was slightly different but the mean behavior was représentative (Table 1).

Peak emergence (>. 10) was in October-November, March, and May.

These observations extend over only 44 weeks, and the longer record for

Ahl suggested that a fourth peak occurred in August.

The greatest incréments in shoot height occurred in the first two

months (Fig. 1, B\ Table 1). At the first observation of cohorts in Ahl,

mean shoot height ranged from 45-143 cm. The minimum values occurred

at the August, September, early April and early May censuses, and these

averaged 51 ± 5 cm, less than half the average of the other months (105

± 20 cm). The mean incrément in the next month ranged from 79-168 cm,

with an average among cohorts of 119 ± 27 cm, but the lowest values

were for the two cohorts with the greatest initial growth. The trend in

growth for subséquent months was similar to that for A. giganteum (Fig. 1,

B). The standard maximum height was 315 ± 50 cm (n = 38).

There was also a substantial change in height distribution over the

year for Ahl. Whereas only 23 % of the initial population was taller

than 300 cm, at the final census 58 % surpassed this height. The différence

was apparently due to a decrease in herbivory by arboreal primates (pro-

bably Cercopilhecus nicliians): 19 % of the shoots présent initially were

obviously eaten or broken distally, but only 6 % were so damaged at the

final census.

Peak mortality was in May and June, with secondary peaks noted at

Source : MNHN, Paris

— 389

</> 4-

1 5 9 13 232 347 094 178

AGE DATE

Fig. 2. — Survivorship (A) as a fonction of âge (months) in A. giganleum (• i$ Agi, o is Ag2),

and (B) as a fonction of time in the initial mixed-age population of A. hanburyi (v) and

A. subsericeum (»).

day 348 (due to Ah2) and at day 039 (due to Ahl). The average mortality

in the other months was .07 ± .02 (Table 1).

Age-specific mortality for A. hanburyi was higher in the first three

months than in the following eight, so the survivorship curve was slightly

concave. However, the sample was less than 50 shoots for ail âges over

six months, and at several âges no mortality occurred in this small sample.

Extrapolation of the mortality of the first four months in Ahl (.044) pre-

dicted 23 months would elapse before the death of ail shoots of one émer¬

gence cohort. About 74 % °f ail deaths (in both Ahl and Ah2) were

concentrated in the initial mixed-age cohorts. The initial cohort in the

two groves (combined n = 134) showed a loss of .07 per month (Fig. 2,

fl; r*= .99, = .004), and the régression predicted the entire cohort

would hâve died by the 14th month.

Aframomum subsericeum

In the one plot of A. subsericeum, emergence rate averaged .06 ± .02

for the seven months for which data are available (censures of day 011

through day 179, Table 1). The mean height of shoots at the first observa¬

tions of each cohort ranged from 19-53 cm. The lowest value was recorded

in early March, and the average among the other months was 42 ± 8 cm. In

the following month the incrément ranged from 40-78 cm, with a mean

of 64 ± 13 cm. The standard maximum height was 269 ± 23 cm (n = 42).

Source : MNHN, Paris

— 390 —

Over the period January to June mortality averaged .07 ± .03, and

the highest rates were in February and June. Only four deaths occurred

among the 34 shoots appearing while the grove was monitored, too few

to obtain meaningful age-specific mortality. However, among the mixed-

age shoots marked in December, survivorship was linear through the

observation period (Fig. 2, B), with a Ioss of .06 per month (r 2 = .99,

Sb = .003). The entire mixed-age cohort would thus hâve been lost

within 17 months.

DISCUSSION

Emergence rates in ail species averaged less than one new shoot per

ten old shoots per month. In A. giganteum, a single maximum in this

rate would characterize undisturbed conditions, with a peak in the wettest

months. A. subsericeum may be similar, but the rates were undifferentiated

through the short observation period. In contrast, each grove of A. han-

buryi showed fluctuations throughout the year, of similar magnitude. If

this was an endogenous feature, it is curious that the fluctuations were

relatively synchronous between widely separated groves. The variation

of émergence rates might be better resolved if not ail older shoots were

considered as the parent population, but only shoots of mature height.

The early puise of emergence in Agi clearly related to manual thinning

of that grove, and such a puise may be expected in ail the species after

thinning by trampling (éléphants) or herbivory (primates). Herbivory is a

prominent feature in Aframomum only regarding the stems of aerial shoots.

No evidence was found of damage to the rhizomes by vertebrates, or of

habituai eating of the leaves. Several primates regularly eat the young

stem of aerial shoots (Sabater-PI, 1977, 1979; Calvert, pers. com.) :

Cercopithecus nictitans, Papio sphinx , Pan troglodytes , and Gorilla gorilla.

However, only Gorilla has a major impact, with A. hanburyi and A. subseri¬

ceum together forming the bulk of the diet in littoral Southern Cameroon

and Rio Muni. A. giganteum , however, is rarely eaten, and no primate

herbivory is known on several other species of the district. C. nictitans

feeding (on Ahl) was confined to the tips of the shoots, not resulting in

the immédiate death of the remainder. Gorilla destroys the entire leafy

portion to reach the stem tissue, and frequently breaks off the shoot at

ground level (Calvert, pers. com.). Entire groves are not destroyed at

once by Gorilla, although an individual may eat many kilograms of Afra¬

momum stem in one day. Typically, a few stems are taken within arm’s

reach of a seated animal, and such feeding sites are separated by several

meters (Calvert, pers. com.). Certainly the growth rates recorded here

suggest “ recovery ” from herbivory is rapid (see also Bullock, 1978).

The general pattern of height growth (Fig. 1) is apparent atall seasons

and in ail species. A lag phase of slow initial growth after emergence was

not conspicuous. Comparing the heights at various âges to the standard

maximum heights showed that A. hanburyi (Ahl) grew most rapidly,

Source : MNHN, Paris

— 391 —

attaining proportions of its maximum of 0.28 ± . 10 at the âge of 2 weeks,

0.65 ± .10 at 6 weeks, and 1.07 ± .07 at 18 weeks. A. giganteum (Ag2)

attained 0.17 ± .04, .43 ± .06 and .75 ± .05 of full growth at these

âges, and A. subsericeum cohorts grew to 0.15 ± .04, .26 ± . 13 and .69

of their standard by the same âges. The actual daily height growth these

represent for 0-2 weeks and 2-6 weeks were roughly 5 cm per day for both

A. giganteum and A. hanburyi shoots, but only 2.5 cm per day for A. subseri¬

ceum. During much of the early rapid growth the shoots bear no lamina,

and so are largely dépendent on translocation of photosynthate from other

shoots.

The initial growth rates may be biased here by the relatively long inter-

vals between censuses. Individuals in each cohort might differ by nearly

four weeks in actual emergence date, and occasionally differ by more

than a meter in height; I hâve taken the means to be indicative.

Flowering in A. giganteum and probably A. subsericeum occurs mostly

during the peak of the rains. With no better resolution than monthly

censuses, the peaks of shoot emergence and flowering cannot be sharply

distinguished: these energetically costly activities may be nearly simulta-

neous. A. hanburyi flowered in a bimodal pattern, contrasting with its

shoot emergence. The population was never entirely out of flower, but

the peaks preceded the rainfall maxima, and flowers were nearly absent

in the major dry season, resulting in a scarcity of mature fruit in May

and June. The Aframomum species thus présent équivalent growth forms

but divergent relationships of végétative and sexual phenology. Alto-

gether, their flowering peaks may be largely non-coincident, so that these

sunbird-pollinated plants warrant further comparison with similarly pattern-

ed Heliconia species, hummingbird-pollinated herbs of the Neotropics

(Stiles, 1978).

Climate-related but diverse phenologies were evidenced by two other

species of forest disturbances, with different patterns in the relative timing

of végétative growth and reproduction. A study of 39 clones of Mega-

phrynium relutinum (Maranlaceæ ) showed new leaf emergence was strongly

biseasonal, coinciding with the wet seasons, but flowering was virtually

restricted to the major dry season. The coincidence of growth and repro¬

duction was seen in 18 clones of the suffrutescent Palisota ambigua (Comme-

linaceæ), but in this case both activities were biseasonal, and lagged after

the rainfall maxima.

Mortality in ail species was strongly related to shoot âge and indica¬

tions of seasonality in mortality were probably due to the unimodal or

periodic variations in shoot emergence. The shoots of ail species pro¬

bably hâve maximum longevities in the range of 1.2-1.5 years, in most

cases with less than 10 % of the cohort dying each month. The notable

différence in predicted longevity of A. hanburyi between shoots of known

âge and the mixed-age cohort suggests an increase in mortality slightly

after the âge of one year, beyond the scope of this study. Such a change

might be due to the timing of growth of végétative and flowering branches.

Moreover, the exact age-dependence is not a characteristic of a genet, but

Source : MNHN, Paris

— 392 —

is also affected by herbivores, and the surrounding plants. Nearby shoots

of the same grove are an important part of any one shoot’s environment,

at least in shading if not also in vascular interchanges.

Thorough intégration of emergence rates, growth, reproduction and

mortality will dépend on accounting for the connection of individual

shoots. Knowledge of Aframomum structural demography still lacks the

critical éléments of the relative timing of long, short and flowering branch

growth. Moreover, it is unlikely that the numbers of each branch type

(per existing mature shoot) is constant. Since végétative and flowering

shoots are certainly expensive productions, their growth is likely to hâve

major effects on the growth and mortality of parent leafy shoots. However,

démographie trends in clone autogeny are beyond the scope of this study.

Acknowledgements : Partial support was provided by the National Géographie

Society, IUCN/World Wildlife Fund, L.S.B. Leakey Foundation, New York Zoological

Society, and Société Forestière de Campo. J. Calvert (Anthropology Dpt., U.C.L.A.)

provided observations on Gorilla feeding.

Literature cited

Bell, A.D., 1979. — The hexagonal branching pattern of rhizomes of Alpinia speciosa

L. (Zingiberaceæ), Ann. Bol. 43 : 209-223.

Bullock, S.H., 1978. — Régénération of Musa atter feeding by Gorilla, Biotropica 10 :

309.

Bullock, S. H., 1980. — Impacts of logging in littoral Cameroon, Commonw. For.

Rev. 58 : 208-209.

Halle, N., 1979. — Architecture du rhizome chez quelques Zingibéracées d’Afrique et

d’Océanie, Adansonia, ser. 2, 19 : 127-144.

Harper, J. L., 1978. — The demography of plants with clonal growth, Verh. K. ned.

Akad. Wet., ser. 2, 70 : 27-48.

Letouzey, R., 1968. — Étude phytogéographique du Cameroun , Éditions Paul Le Cheva¬

lier, Paris, 508 p.

Sabater-Pi, J., 1977. — Contribution to the study of alimentation of lowland gorillas

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Sabater-PI, J., 1979. — Feeding behavior and diet of chimpanzees (Pan troglodytes

troglodytes) in the Okorobikô Mountains of Rio Muni (West Africa), Z. Tierpsychol.

50 : 265-281.

Stiles, F. G., 1978. — Temporal organization of flowering among the hummingbird

foodplants of a tropical wet forest, Biotropica 10 : 194-210.

Source : MNHN, Paris

PHYLLANTHEÆ DE MADAGASCAR. I : A PROPOS DE DEUX

PHYLLANTHUS DE LA SOUS-SECTION SWARTZIANI Webster

J. F. Brunel & J. Roux

Brunel, J. F. & Roux, J. — 27.05.1981. Phyllantheæ de Madagascar. 1 : à

propos de deux Phyllanthus de la sous-section Swartziani Webster, Adansonia,

ser. 2, 20 (4) : 393-403. Paris. ISSN 0001-804X.

Résumé : Cette première note d’une série concernant des Phyllantheæ (Euphor-

biaceæ ) malgaches critiques ou mal connues, confirme la présence, en tant

qu’espèce, de Phyllanthus amarus Schum. & Thonn. à Madagascar, excluant

celle de P. niruri L. D’autre part, une espèce nouvelle, Phyllanthus andrano-

vatensis, voisine de P. fraternus Webster, est décrite.

Abstract : This first note of a taxonomie study on some critical malagasy

Phyllantheæ (Euphorbiaceæ) , confirms the presence, as a species, of Phyllanthus

amarus Schum. & Thonn. in Madagascar, excluding P. niruri L. Moreover,

a new species, Phyllanthus andranovatensis, neighbouring P. fraternus Webster,

is described.

J. F. Brunel, Laboratoire de Biologie Végétale, Université du Bénin, B. P. 1515,

Lomé, Togo.

J. Roux, Laboratoire de Morphologie expérimentale. Institut de Botanique,

Université L. Pasteur, 67083 Strasbourg, France.

L’étude des genres Phyllanthus L. et affines, à laquelle nous procédons,

depuis 1973, en Afrique de l’ouest, nous a nécessairement conduits à recher¬

cher des points de comparaison dans les régions voisines, Afrique orientale

et australe, voire Madagascar. Au cours de prospections dans le sud de

cette île, nous avons pu récolter ainsi un certain nombre d’Euphorbiacées,

herbacées ou arbustives, de la tribu des Phyllantheæ Muell.-Arg. (Mueller,

1866). Parmi celles-ci, les deux plantes analysées dans la présente note,

appartiennent au genre Phyllanthus, caractérisé principalement par des

fleurs mâles sans pistillodes et à disque réceptaculaire généralement seg¬

menté; elles se rattachent de plus à la section Phyllanthus, où les fleurs

mâles sont le plus souvent tristaminées, avec un pollen colporé, et où

l’architecture des individus, marquée d’un dimorphisme raméal, suit le

modèle de Cook (Halle & Oldeman, 1970) : l’axe principal orthotrope,

à phyllotaxie hélicoïdale, porte des ramifications phyllomorphes, caduques,

seules florifères, et à phyllotaxie spirodistique. Enfin, un certain nombre

de critères complémentaires, situent, plus précisément encore, les plantes

envisagées dans la sous-section Swartziani Webster (Webster, 1957) : ce

sont, notamment, des graines costulées sur le dos, un pollen tricolporé,

à exine formant un tectum complet, plus ou moins lisse ou microperforé

en surface, ainsi que la présence, sur la tige érigée adulte, de cataphylles

(feuilles réduites à des écailles) lancéolées triangulaires.

Si l’on utilise la Flore de Madagascar et des Comores, dans laquelle

Léandri (1958) traite des Phyllanthus, l’une des plantes considérées se

Source : MNHN, Paris

— 394 —

rapporte à P. niruri L. var. amarus (Schum. & Thonn.) Léandri, tandis

que les spécimens de l’autre restent impossibles à déterminer.

L’identification de ces derniers est évidemment un problème. Mais

la détermination de P. niruri L. var. amarus (Schum. & Thonn.) Léandri

n’en est pas moins un second, car en Afrique de l’ouest, P. amarus Schum.

& Thonn. est une espèce autonome, et surtout, sans rapport immédiat avec

P. niruri L., taxon néotropical apparemment absent de tout le continent

africain (Brunel & Roux, 1975). Il importe donc de déterminer si les

« P. amarus malgaches » sont identiques à P. amarus Schum. & Thonn.

et dans quelle mesure ils peuvent être effectivement affines de P. niruri L.

Les « Phyllanthus amarus » malgaches ont été récoltés à Morondava,

Tuléar et Fort-Dauphin. Les populations d’origine étaient apparemment

homogènes, toutes semblables et rudérales, comme les P. amarus Schum.

& Thonn. d’Afrique.

Le Phyllanthus indéterminé a été récolté tout d’abord dans les environs

d’Andranovato, près de Fort-Dauphin. Nous l’avons retrouvé l’année

suivante, sur les pentes du Pic St Louis et près d’Amboasary-Sud. Il nous

est apparu d’emblée comme distinct du précédent, en particulier par son

écologie toute différente. Nous l’avons récolté en effet, à Andranovato, en

compagnie de Cypéracées et de Marsileacées. Sur les pentes du Pic St

Louis, la plante se cantonnait en bordure de ruisseaux, et, dans les stations

d’Amboasary-Sud, elle se trouvait dans des mares temporaires, au milieu

de fourrés à Didieréacées. Il s’agit donc d’une plante non rudérale, hygro-

phile, dont le cycle est vraisemblablement fugace dans les conditions natu¬

relles, comme le suggèrent les mares d’Amboasary-Sud, éphémères et rapide¬

ment désséchées.

Les échantillons collectés ont été systématiquement mis en herbier

pour référence et analyses ultérieures. Mais simultanément, ont été récoltées

chaque fois des graines pour mise en culture, celle-ci permettant une étude

plus détaillée des divers stades du développement (architecture, biométrie,

numérations chromosomiques, observations du pollen, etc.). Ces cultures

de populations expérimentales ont été effectuées au Jardin d’essais du

Laboratoire de Biologie Végétale, à l’Université du Bénin, à Lomé, comme

nous le faisons de façon constante pour toutes les plantes récoltées ou mises

à notre disposition (Brunel & Roux, 1976).

I. LES « PHYLLANTHUS AMARUS » MALGACHES

Cultivées simultanément, les populations expérimentales issues de nos

récoltes de « P. amarus » malgaches ne montrent pas, entre elles, de différences

notables. Elles n’en montrent pas plus avec les populations d’origine afri¬

caine ou américaine, cultivées en même temps pour servir de comparaison,

et ceci, même en considérant des caractères mineurs plus ou moins négligés

habituellement, car liés pour la plupart au développement général des

individus.

Source : MNHN, Paris

— 395 —

Ainsi, comme chez le P. amarus Schum. & Thonn. d’Afrique, l’axe

principal orthotrope des plantes malgaches ne produit spontanément de

relais érigés, que de façon relativement tardive, après 3 mois de culture

environ. Ses cataphylles présentent la caractéristique de se nécroser et de

noircir rapidement. L’épiderme de cette tige dressée est coloré par des

anthocyanes aux stades de jeunesse des individus (comme nous avons pu

l’observer aussi sur des populations d'origine guyanaise), mais cette colora¬

tion s’estompe rapidement.

Les ramules plagiotropes, seuls florifères, présentent une zonation

typique du sexe des fleurs : après une zone basale de 1 ou 2 aisselles foliaires

productrices de cymules entièrement mâles, l’axe ne porte, distalement,

TABLEAU I : Comparaison biométrique de deux populations africaine et malgache de

P. amarus Schum. & Thonn. Les couples de valeurs correspondent à des mesures

extrêmes. Les valeurs entre parenthèses signalent des observations exceptionnelles.

« P. amarus

malgache »

(Population

de Tuléar)

P. amarus

Schum. & Thonn.

(Population

de Lomé)

Axe orthotrope :

— longueur des cataphylles en mm. . .

1,3-1,4

Ramules plagiotropes :

— longueur en cm.

4-17

4-20

— nombre de feuilles.

15-50

20-50

— longueur des entrenœuds de la zone

médiane en mm.

1-4

2-4

Fleurs femelles :

— longueur du pédicelle en mm. . . .

0,9-1,7

1-1,7

— longueur des lobes périanthaires en

0,9-1,1

0,8-1,2

— longueur du style en mm.

0,1-0,15

0,1-0,2

Fleurs males :

— longueur du pédicelle en mm. . . .

0,9-1,3

0,6-1,2

— longueur des lobes périanthaires en

0.3-0.6

0,3-0,6

— grain de pollen, longueur en microns

18,5-22

19-23

— nombre de sillons.

Fruits •

— diamètre en mm.

1,7-1,96

1,7-2

Graines :

— nombre de côtes sur la face convexe.

6-(7)

(6)-7-(8)

— longueur en mm.

0,9-1

Numérations chromosomiques :

— n chromosomes.

Source : MNHN, Paris

— 396 —

que des cymules bisexuées, c'est-à-dire composées d’une fleur femelle,

flanquée au moins d’une fleur mâle. Ces fleurs ont très généralement 5 lobes

périanthaires.

Cette morphologie végétative et florale est illustrée ici (PI. 1 ; 3, C;

4, G). Les mesures quantitatives définissant le taxon sont, d’autre part,

rassemblées dans le tableau I. Ce tableau, qui permet au surplus une com¬

paraison chiffrée entre la plante malgache et le P. amarus Schum. & Thonn.

de l’Ouest africain, ne fait guère ressortir qu’une concordance évidente.

Nos « Phyllanthus amarus » malgaches appartiennent donc bien à l’espèce

Phyllanthus amarus Schum. & Thonn., espèce type de la sous-section

Swartziani Webster, à laquelle nous les avions d’ailleurs rattachés d’emblée.

C’est donc souligner par là que les plantes considérées n’appartiennent

pas à la sous-section néotropicale Niruri Webster, typifiée par P. niruri L. :

font défaut, en effet, les critères essentiels de cette subdivision, notamment

des cataphylles linéaires subulées, des feuilles assimilatrices à base du

limbe asymétrique, des fleurs femelles dont les lobes périanthaires ont une

nervure ramifiée, un pollen tétracolporé à exine microréticulée formant

tectum partiel, et des graines à surface verruqueuse.

Mais une telle affirmation ne saurait évidemment s’étendre sans con¬

trôle à l’ensemble du P. niruri L. var. amarus (Schum. & Thonn.) Léandri.

Aussi, les exsiccata déposés par Léandri au Muséum de Paris, et repré¬

sentatifs du taxon, ont-ils été analysés de leur côté.

Identiques à nos propres plantes, ils ne diffèrent en rien du P. amarus

Schum. & Thonn. de l’Ouest africain, et n’appartiennent pas davantage

à la sous-section Niruri Webster. Il en est de même d’ailleurs pour la var.

baronianus Léandri : les caractères distinctifs de cette « variété » (rameaux

anguleux, tépales mucronés, stipules cordés d’un côté) sont, en fait, très fré¬

quents chez P. amarus Schum. & Thonn., et les exsiccata correspondants ont

été annotés par Webster lui-même comme « P. amarus Schum. & Thonn. » L

L’identité des plantes considérées est donc claire. Si l’on ajoute que

nous n’avons pu trouver, dans les divers herbiers consultés, aucun indice

de l’existence d’un P. niruri L. à Madagascar, il apparaît que ce taxon est

à exclure de la flore spontanée de l’Ile, comme il a dû l’être de celle d’Afrique

Occidentale (Brunel & Roux, 1975). Tout au plus peut-on envisager des

introductions récentes et localisées, comme nous en avons nous-mêmes

effectué à Lomé. Mais celles-ci n’en conféreraient pas pour autant l’indi-

génat au P. niruri L.

II. LE PHYLLANTHUS D’ANDRANOVATO

Cette plante, que les flores actuelles ne permettent pas de déterminer,

ne semble pas avoir été antérieurement récoltée. En particulier, aucun des

exsiccata déposés au Muséum de Paris ne lui correspond.

1. Le rattachement par Léandri de P. amarus Schum. & Thonn. à P. niruri n'est en somme

que le prolongement des conceptions de Mueller (1866), considérant ce dernier taxon

comme extrêmement polymorphe et de vaste répartition. Si Hutchinson (1913) avait déjà

reconnu l'autonomie spécifique du P. amarus africain, conforme au protologue de Schu¬

macher & Thonning (1829), c'est surtout à Webster (1955) que revient le mérite d'une

clarification de la situation nomenclaturale du P. niruri L., et de sa circonscription exacte.

Source : MNHN, Paris

— 397 —

PI. I. — Phyllanthus amarus (Brunet 2114 ) : A, fragment de ramule plagiotrope; B, cataphylles

de l’axe orthotrope (extrémités nécrosées et noirâtres); C, couple de fleurs mâle et femelle

(cymule hermaphrodite), à l’anthèse de la fleur mâle, ici bistaminée; D, méiose pollinique,

métaphase II; E, aspect du fruit avant déhiscence; F, morphologie d'un disque de fleur

femelle après suppression du fruit (la columelle est restée attachée dans l'axe de la fleur).

Les traits d’échelle représentent 1 mm, sauf en D.

A port grêle, elle révèle en culture une croissance lente, atteignant à

peine, au bout de trois mois, une hauteur moyenne de 20 cm. L’axe primaire

de l’individu, érigé, se ramifie promptement, les aisselles foliaires basales

donnant précocement naissance à des relais orthotropes. Après les coty¬

lédons et 4 feuilles assimilatrices (feuilles « juvéniles »), cet axe porte des

cataphylles petites, longues de 0,8-0,95 mm.

Les ramules plagiotropes (PI. 2, A) ne dépassent guère une longueur

de 5 cm, avec, dans leur région médiane, des entrenœuds longs de 2-3 mm.

Ils portent en général une quinzaine de feuilles assimilatrices à limbe oblong-

elliptique, plus ou moins purpurescent à la face supérieure, glauque plus

ou moins rosé à la face inférieure, et à 4-6 paires de nervures secondaires.

Les stipules de ces feuilles, triangulaires, atteignent une longueur de 1,5 mm.

Les inflorescences de ces plantes monoïques se cantonnent sur les

ramules selon un schéma constant : après un segment proximal stérile

Source : MNHN, Paris

— 398 —

PI. 2. — Phyllanthus andranovatensis (Brunei 2/30) : A, Ramule plagiotrope inséré sur un

fragment d'axe orthotrope; B, fleur mâle bistaminée, vue de 3/4; C, fleur femelle, mor¬

phologie du disque après suppression du jeune fruit; D, fruit avant déhiscence en vue

latérale, détaché du réceptacle; E, méiose pollinique, métaphase II. (Les traits d’échelle

représentent 1 mm, sauf en E).

de 1-3 axillums vides, le ramule comporte en effet 4-6 aisselles productrices

de cymules pluriflores mâles, puis, distalement des aisselles uniflores femelles.

Les fleurs mâles (PI. 2, B), campanulées, ont un petit pédicelle long de

0,4-0,8 mm. Les lobes périanthaires, généralement au nombre de 5, atteignent

0,6-1,3 mm de longueur, et 0,7-0,9 mm de largeur; ils sont obovales, à

marge blanche, avec une nervure médiane verte, plus ou moins anthocya'née.

Le disque est formé de 5 petits segments lobulés. Les étamines sont géné¬

ralement au nombre de 3, mais, par suite d'une fréquente méiomérie, ce

nombre peut se réduire à 2; les filets sont presque entièrement soudés, mais

les anthères, à déhiscence transversale par rapport à l'axe de la fleur, et

atteignant 0,2-0,4 mm d' longueur, demeurent libres. Le pollen est tricol-

poré, à tectum lisse, avec des dépressions microperforées; son axe polaire

atteint une longueur de 22,5-25 microns (PL 4, A-F).

Les numérations chromosomiques, effectuées lors de la méiose polli¬

nique ont montré n = 13 chromosomes (PI. 2, E).

A l'anthèse, les fleurs femelles ont un pédoncule robuste, atteignant

au moins 0,6 mm de longueur. Les lobes périanthaires sont alors ovales

oblongs; à marge blanche, avec une nervure médiane plus ou moins antho-

cyanée et un apex arrondi rappelant ainsi le périanthe mâle, ils sont cepen¬

dant un peu plus étroits, avec une largeur de 0,5-0,6 mm. Le disque (PI. 2,

C) est annulaire, multilobé ou même lacinié. L’ovaire, sessile et subglobu¬

laire, est surmonté de styles libres dès leur base, longs de 0,3-0,4 mm,

bifides, et se terminant en lobes cylindriques.

Source : MNHN, Paris

— 399 —

PI. 3. — Morphologie des graines : P. andranovatensis ( Brune! 2130 ) : A, costulation au dos

de la graine; B, vue, région du hile. — P. amarus ( Brunei 2114) : C, costulation au dos

de la graine. (Le trait d'échelle représente 1 mm).

Le fruit (PI. 2, D) est porté par un pédoncule atteignant en moyenne,

au terme de sa croissance, 1,95 mm de longueur. C’est une capsule plus

large que haute, à surface généralement lisse à la base, et légèrement papil-

leuse au sommet. Elle atteint, avant déhiscence, un diamètre de 2,2-2,4 mm.

Elle est entourée du périanthe persistant et accrescent, dont les divisions

atteignent alors 1,9-2,3 mm de longueur et une largeur de 1-1,5 mm.

Les graines matures (PI. 3, A, B) sont des onglets sphériques longs de

1,05-1,3 mm, de couleur brun pâle, et portant sur leur face convexe 9-11 lignes

de costules longitudinales.

Ainsi décrite, la plante d’Andranovato apparaît proche de Phyllanthus

fraternus Webster, espèce rudérale dont la vaste répartition (Indes, Afrique

tropicale 1 et Antilles) rend plausible une éventuelle implantation localisée

en certains points de Madagascar. En effet, s’il faut bien préciser que ce

P. fraternus Webster n’a pas été signalé dans l'Ile, et qu’aucun exsiccatum

lui correspondant ne figure dans les herbiers relatifs à Madagascar, la

plante qui nous intéresse possède, avec lui, un certain nombre de caractères

communs. Ce sont, en particulier, un appareil végétatif rameux dès la

base des individus, une répartition florale, sur les ramules plagiotropes,

comportant une zone distale de fleurs femelles solitaires, et, sur ces fleurs

femelles un disque multilobé et lacinié.

Mais, à côté de ces convergences, ce Phyllanthus malgache se distingue

nettement du P. fraternus Webster par tout un ensemble de caractères. Ce

sont, tout d’abord des critères qualitatifs comme la coloration des épidermes

(non anthocyanés chez P. fraternus Webster), et surtout, la présence cons¬

tante d’une zone d’aisselles stériles à la base des ramules florifères. Mais

s’ajoutent également des critères quantitatifs, qui permettent une sépara-

1. La plante que les flores actuelles de l’Ouest africain dénomment P. niruri L. correspond

en effet, en réalité, à P. fraternus Webster (Brunel & Roux, 1975).

Source : MNHN, Paris

— 400 —

TABLEAU II : Comparaison biométrique de la population togolaise du P. fraternus

Webster et de celle du Phyllanthus d’Andranovato. Les couples de valeurs corres¬

pondent à des mesures extrêmes.

P. fraternus

« P. d’Andranovato »

Cataphylles de l'axe orthotrope :

—- longueur (mm).

1,5

0,95

PÉRIANTHE FEMELLE :

nombre de lobes.

— longueur maximale des lobes en fin

d’accrescence (mm).

0,9-1,4

1,9-2,3

— largeur de la nervure médiane des

lobes (mm).

0,25

1,0-1,5

Fruits :

— longueur du pédicelle (mm). . . .

1,4-1,6

1,95

Graines :

— nombre de costules dorsales. . . .

7-8

9-11

Cytotypes :

n chromosomes.

tion sans ambiguïté des deux taxons considérés, comme le montre le

tableau II.

Même en faisant abstraction des autres caractères énumérés, le caryo¬

type, à lui seul, apporte déjà la preuve de l’indépendance de la plante

d’Andranovato, vis-à-vis du P. fraternus Webster. Aussi, nous paraît-il

justifié de créer pour elle une nouvelle espèce, P. andranovatensis, le nom

spécifique rappelant le premier lieu de récolte 1 .

Phyllanthus andranovatensis Brunei & Roux, sp. nov.

Herba annua immo etiam brevi vila, 10-20 cm alla, glabra, caulibus ima basi plus

minusve decumbentibus, purpurascenlibus, sublerelibus, emmiltenlibus ramulos floriferos

patentes usque ad 5 cm longos. Folia oblongo-elliptica, usque ad 8 mm longa et 2,5 mm lata,

supra viridia vel purpurascentia, subtus glauca vel pallide rosea, supra obscura, subtus

prominula Costa, nervis lateralibus 4-5 ; stipulée lineares, triangulæ, integra;, 1,5 mm longæ.

lnflorescentiæ monoeciæ : in quoque ramulo, in basi 1-3 axillæ vacuæ, denique 4-6 axillæ

cum cymulis masculinis, deinde axillæ cum floribus femineis singulis. Flos masculus cam-

panulatus, pedicello 0,4-0,8 mm longo; calyx 5-lobatus, lobis ovatis, apice rotundatis,

albidis cum nervo medio viridi vel pallide roseo, 0,6-1,3 mm longis, 0,7-0,9 mm latis; discus

5-lobatus; stamina 2-3, filamentis connatis, antheris rima transversa, 0,2-0,4 mm longis.

Pollinis grana ca. 22,5-25 \xm longa, tecta, tricolporata. Flos femineus pediceUatus ; calyx

5-lobatus, lobis oblongo-ovatis, apice rotundatis, 0,6 mm longis, 0,5-0,6 mm latis, viridibus

1. L'étymologie du nom Andranovato (prononcé andranouvatt). fait allusion aux rochers

baignant dans les lagunes à l'ouest de Fort-Dauphin. L'endroit est également connu comme

« Ilôt des Portugais », ces derniers y ayant construit un fortin en 1504.

Source : MNHN, Paris

— 401 —

PI. 4. — Morphologie du grain de pollen : Phyllanthus andranovatensis (Brunei 2130) : A, B,

C, L. O. Analyse; D, endoaperture vue de face; E, coupe optique; F, vue de la surface

externe au MeB x 3500. — Phyllanthus amarus (Brunei 2114) : G, vue de la surface externe,

au MeB x 2000. (Mph : A, B, C, D, E x 1700).

Source : MNHN, Paris

— 402 —

vel purpurascentibus, margine albida; discus mullilobalus vel lacinialus : ovarium sessile,

slylis 0,3-0,4 mm longis, ima basi liberis, el bifidis cum lobis subteretibus.

P. fraterno Webster affinis, sed calaphyllis brevioribus, ramulis purpurascentibus,

floris feminei calyce cum 5 lobis longioribus et seminibus costis dorsualibus 9-11 differt.

Type : BruneI 2130, Andranovato, prés de Vinanibe, région de Fort-Dauphin,

8.1975 (holo-, STR; iso-, TOGO, P, B, TAN).

Répartition géographique : Connu seulement du Sud de Madagascar

(Région de Fort-Dauphin).

Utilisation : Sous le même nom d’ « ambanivola », les habitants

d'Andranovato utilisent les Phyllanthus herbacés des alentours (P. andrano-

valensis, P. tenellus Roxb., P. amarus Schum. & Thonn. et P. ampandan-

dravæ Léandri), pour soigner les maux intestinaux des jeunes enfants. Cet

usage, coïncidant avec la même utilisation des Phyllanthus herbacés et

notamment de P.fraternus Webster dans l’Ouest Africain, particulièrement

dans la région du Golfe du Bénin, est sans doute à rapprocher de l’action

antibactërienne décelée par Nozeran & Haicourt (1974) dans les décoc¬

tions de feuilles de divers Phyllanthus.

Au terme de cette étude, l’identité des deux plantes analysées se trou-

van ainsi établie, il apparaît donc nécessaire de modifier en conséquence

la clé de détermination donnée dans la Flore de Madagascar et des Comores,

et cette modification peut être envisagée de la manière suivante :

46. Feuille dépassant 3 mm, stipules atteignant 1,5 mm.

47. Disque des fleurs femelles lacinié, à lobes plus ou moins alternitépales.

48. Fleur femelle solitaire à l'aisselle des feuilles, dans la partie dis¬

tale des ramules; 5 tépales; feuilles, cataphylles et axes antho-

cyanés . P. andranovatensis

48'. Fleur femelle à l’aisselle des feuilles, associée à une fleur mâle (au

moins) dans la partie distale des ramules; 5 tépales; feuilles et

axes verts, cataphylles noirâtres. P. amarus

Remerciements : Cette première publication sur des plantes malgaches est, pour

nous, l'occasion de remercier très sincèrement l’Association Amitié-Madagascar-Inter-

national (AMI) pour les facilités qu’elle nous a accordées lors de nos voyages, et Mr le

Professeur J.-F. Leroy, directeur du Laboratoire de Phanérogamie (Muséum d’Histoire

Naturelle, Paris), qui a aimablement mis à notre disposition de nombreux échantillons

malgaches de l’Herbarium.

Bibliographie

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Africaines. I : Phyllanthus niruri L., une espèce à exclure des Flores de l’Afrique

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Brunel, J. F. & Roux, J., 1976. — Notes sur les Phyllanthoideæ (Euphorbiaceæ) Ouest-

Africaines. II : A propos du polymorphisme de Phyllanthus sublanatus Schum.

& Thonn., Bull. Soc. Bot. Fr. 123 : 365-376.

Halle, F. & Oldeman, R. A. A., 1970. — Essai sur l’architecture et la dynamique de crois¬

sance des arbres tropicaux, 178 p., Paris.

Source : MNHN, Paris

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Hutchinson, J., 1913. — Euphorbiaceæ, in Flora of Tropical Africa 6 (1) : 692-736.

Léandri, J., 1958. — Euphorbiacées, Flore de Madagascar et des Comores, fam. 111,1,

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Mueller, J., 1866. — Euphorbiaceæ (excl. Euphorbieæ), in A. DC., Prodromus 15 (2) :

189-1286.

Nozeran, R. & Haicourt, R., 1974. — Mise en évidence d’une activité antibactérienne

chez des Phyllanthus (Euphorbiacées), C. R. Acad. Sci. Paris, ser. D, 278 : 3219-

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Nat. Math., Afhand 4 : 189-197.

Webster, G. L., 1955. — Studies of the Euphorbiaceæ, Phyllanthoideæ 1., Contr. Gray

Herb. 52 : 44-63.

Webster, G. L., 1957. — A monographie study of the West Indian species of Phyllanthus

L., J. Arnold Arbor. 38 : 295-324.

Source : MMHN, Paris

OBSERVATIONS SUR LES CARACTÈRES STAMINAUX ET LA

CLASSIFICATION DES OSBECKIEÆ (MELASTOMATACEÆ) CAP¬

SULAIRES AFRICAINES

H. Jacques-Félix

Jacques-Félix, H. — 27.05.1981. Observations sur les caractères staminaux

et la classification des Osbeckieæ (Melastomataceæ) capsulaires africaines,

Adansonia , ser. 2, 20 (4) : 405-429. Paris. ISSN 000I-804X.

Résumé : Discussion sur la morphologie staminale des Osbeckieæ (Melasto¬

mataceæ). Il est démontré que le dimorphisme est un caractère générique ina¬

déquat. En conséquence : 1) le concept des genres africains, Dissotis et Anthero-

toma , est réajusté; 2) le genre Heterotis est létabli; 3) 1 sous-genre nouveau,

1 section nouvelle et 14 combinaisons nouvelles sont proposées.

Abstract : Discussion on the staminal morphology of Osbeckieæ ( Melasto¬

mataceæ ). It is demonstrated that the dimorphism is an inadéquate generic

character. Conséquent ly : 1 ) the concept of african généra Dissotis and Anthero-

toma is readjusted; 2) the genus Heterotis is reinstated; 3) 1 new sub-genus,

1 new section and 14 new combinations are proposed.

Henri Jacques-Félix, Laboratoire de Phanérogamie, 16 rue Buffon. 75005 Paris,

France.

Bien que complexe, un genre peut être homogène dans la mesure où

les groupes qui le constituent sont plus semblables entre eux qu’ils ne le

sont avec des genres voisins. Par contre, il est hétérogène lorsque certains

de ces mêmes groupes sont plus proches de genres voisins qu’ils ne le sont

entre eux. Cette dernière situation est exactement celle du genre Dissotis

Benth., dont certaines des subdivisions sont difficilement séparables du

genre Osbeckia tandis que d’autres en sont bien distinctes. Ces difficultés

proviennent du fait que ces deux taxa, auxquels on peut ajouter les Anthero-

toma , ont été établis et constitués sur la base du seul caractère staminal,

secondaire et fluctuant. Ce problème nous conduit à revoir certaines des

particularités présentées par l’androcée des Melastomataceæ , principalement

celui des Osbeckieæ , tribu à laquelle appartiennent nos genres litigieux.

A partir du caractère mélastomatacéen de fleurs diplostémones et

d’étamines pliées dans le bouton, deux tendances évolutives, plus ou moins

liées, se manifestent chez la plupart des groupes de la famille : allongement

du connectif en dessous des thèques; dimorphisme staminal.

A. PÉDOCONNECTIF, ÉPERON ET APPENDICES

Les étamines introrses des Melastomataceæ sont généralement très

dorsiventrales, c’est-à-dire que le connectif est relativement saillant, avec

un système vasculaire ramifié dans le sens proximal. La base elle-même,

Source : MNHN, Paris

— 406 —

souvent épaissie ou appendiculée à l’articulation avec le filet, se situe,

selon les groupes ou espèces, immédiatement sous les thèques, ou bien

en est séparée par un allongement axial que nous avons qualifié de « pédo¬

connectif » (Jacques-Félix, 1953 : 977).

Triana (1871 : 6), reconnaissait deux sortes d’étamines : celles dont

l’appendice frontal indiquerait que le filet s’insère sur la face postérieure

du connectif; celles dont l’appendice dorsal indiquerait que le filet s’insère,

à l’inverse, sur la face antérieure. II s'agit là d’une interprétation quelque

peu subjective, car il ne manque pas de connectifs non appendiculés, ou

appendiculés sur les deux faces. Cependant, il y a bien une remarque à

faire sur la nature de ces productions. On peut observer que lorsqu’un

appendice existe sur les étamines sans pédoconnectif, il est généralement

dorsal, solitaire et entier, en forme d’éperon, comme chez les Gravesia,

par ex., parmi les Sonerileæ, ou franchement transversal, comme chez les

Memecylon. Par contre, les étamines de nos Osbeckieæ, qui sont typique¬

ment dépourvues d’éperon, ont souvent un pédoconnectif, généralement

prolongé par un ou deux appendices frontaux, rarement épaissi d’un talon

dorsal peu évident. D’après C. Wilson (1950), qui a pourtant remarqué

que seuls les éperons et pédoconnectifs sont vascularisés, tous ces appendices

sont de même nature, et seraient les vestiges d’une ramification ancestrale

des étamines. Il est plus simple, croyons-nous, d’admettre que ces forma¬

tions résultent d’une croissance contrariée par le renversement des étamines

dans le bouton. De plus, elles ne sont pas toutes identiques. L’éperon dorsal

et le pédoconnectif sont des prolongements homologues du connectif,

ce qui explique qu’ils sont généralement exclusifs l’un de l’autre; par contre,

les autres productions que porte le pédoconnectif, soit de face à son arti¬

culation avec le filet, soit en un point quelconque du dos, sont de simples

excroissances de moindre importance.

Malgré l’explication banale de leur formation, ces différentes parties

de l’étamine conservent tout leur intérêt systématique : l’éperon dorsal

est un bon caractère générique; les appendices sont aussi de bons caractères

par la diversité de leurs formes.

B. LE DIMORPHISME STAMINAL

Deux voies évolutives sont à l’origine de l’inégalité des verticilles

staminaux. Chez celle que nous qualifions de régressive, il y a seulement

un moindre développement des différentes parties des étamines internes

(épipétalaires), sans grande incidence morphologique. Cependant, dans les

cas les plus extrêmes, non atteints chez nos Osbeckieæ , ces étamines peuvent

être réduites à un état rudimentaire; elles sont plus rarement inexistantes,

les fleurs devenant ainsi monostémones (Jacques-Félix, 1976 : 374). Selon

une autre voie, que nous qualifions de progressive c’est, inversement, le

développement exclusif, ou plus important, du pédoconnectif des étamines

externes (épisépalaires) qui détermine un véritable dimorphisme; le pédo¬

connectif affecte une forme particulière et les appendices frontaux, mieux

Source : MNHN, Paris

— 407 —

différenciés, révèlent alors des caractères distinctifs nouveaux. Chez plu¬

sieurs groupes de Dissotis, les étamines internes sont également un peu

différenciées, avec pédoconnectif court, mais visiblement appendiculé.

L’allongement du connectif est donc le préalable habituel du dimor¬

phisme chez nos Osbeckieæ, car il est rare que les pédoconnectifs soient

également développés sur les deux verticilles, et aussi, toujours chez les

Osbeckieæ, que les étamines soient dimorphes sans inégalité des connectifs

(Dissotis wildei Jac.-Fél., du Zaïre, et Osbeckia togoensis Leuenberger,

du Togo, font partie des exceptions).

1. Variations intraspécifiques

Les caractères staminaux, y compris le degré de dimorphisme, sont

habituellement stables chez une même espèce et contribuent à sa définition.

Cependant, il arrive parfois que des plantes, dont les étamines sont homo-

morphes par réduction du verticille externe, apparaissent chez des espèces

normalement hétérostémones. Triana (1871 : 164) avait fait cette remarque

sur Dissotis debilis (Sond.) Triana, et n’accordait, de ce fait, que peu de

valeur à ce caractère. Nous-même avons trouvé ces formes sur Dissotis

irvingiana Hook., et les avons qualifiées d’ « osbeckioïdes » (Jacques-

Félix, 1935 : 370), de tels spécimens étant conformes à la définition habi¬

tuelle des Osbeckia. Puis, A. & R. Fernandes, en procédant à une étude

attentive de cette question (1954b), ont trouvé un tiers de formes osbeckioïdes

sur 68 spécimens examinés du Dissotis phæotricha (Hochst). Hook. f.

Ces « anomalies » ont plusieurs origines:

a) Osbeckioïdie adaptative: développement accéléré et néoténie. — Le

Dissotis irvingiana se prête remarquablement bien à l’examen de ces modi¬

fications. Les plantes qui s’écartent du type normal, à fleur grande, penta¬

mère, avec étamines dimorphes et discolores, présentent une série d’états

qui aboutissent à la fleur petite, tétramère, avec étamines homomorphes

et concolores (PI. 1, 1-5). A ce dernier stade, la réduction du pédoconnectif

entraîne celle des appendices frontaux; les anthères ne sont plus subu-

lées, mais oblongues et plus ou moins tronquées.

L’influence des conditions de croissance est évidente. Dans tous les

cas ce sont des spécimens récoltés sur des substrats insuffisants, ou à des

altitudes supérieures à celles qui conviennent au taxon considéré. Enfin,

certaines de ces espèces annuelles, chez lesquelles l’osbeckioïdie est fré¬

quente, sont également susceptibles de fleurir à l’état de plantule, réalisant

ainsi des cas évidents de néoténie, dont les caractères, tant génériques que

spécifiques, sont altérés.

b) Osbeckioïdie récessive : variétés isostémones. — Selon A. & R. Fer¬

nandes (1954a : 71; 1954b : 185), l’osbeckioïdie, c’est-à-dire l’apparition

accidentelle de caractères du genre Osbeckia chez des espèces de Dissotis,

est sous la dépendance de facteurs génétiques. Car, font-ils remarquer, les

Source : MNHN, Paris

— 408 —

spécimens observés sont, soit à fleurs hétérostémones, soit à fleurs isosté-

mones, sans jamais porter de fleurs des deux types. Ces formes sont diffé¬

rentes de celles que nous venons de signaler. Elles se manifestent par l’égali¬

sation des deux verticilles staminaux, sans qu’il y ait nécessairement réduc¬

tion de taille des fleurs et des étamines. Deux cas peuvent se présenter :

1° les spécimens osbeckioïdes ne diffèrent que par leurs fleurs et apparaissent

çà et là parmi les populations normales, comme nous pouvons en observer

chez D. irvingiana (PI. 1, 6); 2° les spécimens isostémones diffèrent aussi

par quelques autres caractères, ou constituent de petites populations homo¬

gènes dans des stations ou régions géographiques isolées, formant ainsi des

variétés plus ou moins stables. Ainsi, on ne connaît au Cameroun que des

populations osbeckioïdes du Dissotis tisserantii Jac.-Fél. (PI. 1, 9’). Le

D. irvingiana nous fournit aussi l’exemple d’une population isolée sur un

pointement rocheux intraforestier du Gabon, dont les fleurs sont de taille

normale et les deux verticilles staminaux presque égaux (PI. 1, 7). On notera

que, dans ces conditions, les étamines internes sont également assez bien

différenciées : il y a uniformisation, mais non réduction, des étamines.

2. Gradation intragénérique du dimorphisme

L'existence d’une osbeckioïdie rémanente ou variétale, telle que nous

venons d’en citer des exemples, a nécessairement pour corollaire l’existence

possible d’espèces isostémones parmi des congénères hétérostémones. En

d’autres termes, un bon genre peut parfaitement réunir des espèces pré¬

sentant tous les stades d’évolution du dimorphisme. C’est le cas chez nos

Osbeckieæ.

3. Mécanisme de la diversité et de la variabilité des caractères

staminaux : dimorphisme, forme des anthères, etc.

Les précédentes constatations nous conduisent à faire quelques remar¬

ques sur le jeu des corrélations dont dépend la morphologie de l’androcée.

Deux causes initiales nous semblent à l’origine des séries évolutives concer¬

nant la formation d’un pédoconnectif et le dimorphisme qui en est générale¬

ment la conséquence. La première, à laquelle nous avons déjà fait allusion,

à propos de l’hypothèse de Wilson (1950), est la position repliée des éta¬

mines au cours de la préfloraison; il suffît de disséquer une fleur avant

l’anthèse, pour comprendre que pédoconnectifs arqués, éperons dorsaux

et autres appendices, résultent de la contradiction entre cette position et la

tendance basifuge de la croissance, ce que confirme le sens inverse de la

ramification vasculaire du connectif. La seconde est la situation périgyne

ou épigyne de ces étamines. Le plus souvent, chez nos Osbeckieæ, les

anthères sont périgynes; au cours de I’organogenèse, elles sont progressive¬

ment invaginées par la soudure intercalaire de l’ovaire à l’hypanthe, d’où

leur forme allantoïde-linéaire à sigmoïde-subulée et la nécessité d’un filet

Source : MNHN, Paris

— 409 —

Source : MNHN, Paris

— 410 —

ou d’un pédoconnectif de même longueur pour assurer leur extraction lors

de l’anthèse. Quant au dimorphisme, il résulte de l’écart de temps dans

l’initiation respective des deux verticilles : tout retard dans le développe¬

ment des étamines internes en compromet le logement périgyne et en

accentue la réduction osbeckioïde.

La contre-expérience nous est fournie par des espèces — autres que

les Osbeckieæ — chez lesquelles l’ovaire est préalablement conné à l’hy-

panthe, et dont les étamines, nécessairement épigynes, sont plus souvent

homomorphes, tronquées ou oblongues. Nous avons une Osbeckiée,

Dissotis tubulosa, qui est isostémone, du fait que l’allongement de l’hypanthe

réalise une chambre épigyne suffisant au logement des étamines situées au

niveau des longues soies apicales de l’ovaire. Enfin, c’est par ce même

processus que se produisent les modifications osbeckioïdes que nous avons

décrites : les étamines, qui ne sont pas engagées dans les sacs périgynes,

en raison d’une croissance accélérée, affectent d’emblée des formes diffé¬

rentes de celles de l’espèce en cause, mais identiques à celles d’espèces

connues comme isostémones, à anthère courte, et pédoconnectif appendi-

culé rudimentaire. Aux exemples déjà cités, nous pouvons ajouter celui de

VOsbeckia chinensis L., espèce-type du genre, qui est une herbe pérennante,

remarquable par ses étamines longuement rostrées, alors que sa variété

pusil/a , annuelle et à évolution rapide, a des étamines tronquées, ou seule¬

ment apiculées (Hansen, 1977 : 61, fig. 9).

C. VALEUR SYSTÉMATIQUE DU DIMORPHISME STAMINAL

Ainsi, par sa généralisation à l’ensemble de la famille, le dimorphisme

staminal nous apparaît comme le meilleur et le pire des caractères. Le meil¬

leur, car cette prodigieuse diversité des étamines a contribué à l’épanouisse¬

ment des Melastomataceæ en quelque 4500 espèces. Le pire, car les grada¬

tions sont continues et vont de l’isomorphie parfaite à la dimorphie specta¬

culaire. Prendre l’un de ces degrés comme caractère distinctif pour établir

des unités supraspécifiques, peut conduire à dissocier un même phylum,

selon que les espèces en sont isostémones ou non; le prendre, inversement,

comme caractère associatif, peut conduire, tout aussi fâcheusement, à la

réunion de lignées différentes dans un même genre hétérogène.

Conséquences sur le classement des Osbeckieæ capsulaires

Le genre Dissolis a été établi par Bentham (1849), qui l’a séparé du

genre Osbeckia en prenant le dimorphisme staminal comme caractère

distinctif. Ce même genre a eu ses limites élargies par Bentham & Hooker

(Généra Plantarum, 1867), qui lui ont attribué la plupart des Osbeckieæ

hétérostémones, dont des genres reconnus antérieurement, en prenant cette

fois le dimorphisme staminal comme caractère associatif.

Peu après, Triana (1871 : 164) préconise le seul allongement du con¬

nectif comme caractère permettant de distinguer les Dissotis des Osbeckia ;

Source : MNHN, Paris

— 411 —

malheureusement, chez presque tous ces derniers, y compris chez l'espèce-type,

le connectif est plus ou moins épaissi en dessous des thèques, et le caractère

figure dans la description du genre (Hansen, 1977 : 17). Ainsi, la notion

d’allongement est également subjective si ce caractère n’est accompagné

d’un autre qui soit discontinu. Toutefois, étant plus immédiatement discer¬

nable, et moins sujet à l’indécision, ce caractère permit à Triana de classer

toutes les espèces litigieuses d’Afrique dans le genre Dissotis, n’en laissant

aucune dans le genre Osbeckia.

Cogniaux (1891) adopte une attitude inverse. Appliquant la dicho¬

tomie artificielle du Généra Plantarum dans sa monumentale monographie,

il est conduit à disperser dans l’un ou l’autre des genres Osbeckia et Dissotis,

non seulement des espèces affines, ne différant entre elles que par le degré

de leur dimorphisme, comme les Dissotis multiflora (Sm.) Triana et D. brazzæ

Cogn., par ex., mais aussi des spécimens de même espèce, les uns hétérosté-

mones, tel D. phæotricha, les autres, osbeckioïdes, nommés Osbeckia zambe-

ziensis Cogn.

Ce même concept prévalant dans les monographies régionales, comme

celles de Gilg (1898) pour l’Afrique et de Perrier de la Bâthie (1932)

pour Madagascar, la situation des Osbeckieæ devient particulièrement

confuse : 1) les limites imprécises entre Dissotis et Osbeckia posent le

dilemme pour plusieurs espèces qui, au gré de l’interprétation subjective

des auteurs, sont transférées de l’un à l’autre genre, dont la composition

est ainsi hétérogène; 2) les deux genres sont respectivement polyphylé-

tiques : Dissotis inclut les Melastomastrum Naud., Heterotis Benth., et

Argyrella Naud., parce qu’ils sont normalement hétérostémones ; Osbeckia

inclut les Rousseauxia DC. 1 , à cause des fleurs isostémones.

D. TÉTRAMÉRIE ET TAILLE DES FLEURS

La fleur des Osbeckieæ est rarement tétramère. Ce caractère n’a de

valeur générique que chez les Dichætanthera, ce qui les distingue, entre

autres, des Dissotis subgen. Dissotidendron. Chez les Osbeckia et Dissotis,

le caractère est spécifique, et souvent fluctuant. C’est ce qui nous conduit

à en parler, car le passage du type 5 au type 4 accompagne souvent la réduc¬

tion osbeckioïde des étamines. Il y a environ un tiers d’espèces tétramères

chez les Osbeckia asiatiques. Chez les Dissotis la tétramérie ne s’observe

guère que chez les plantes que nous rassemblons dans le complexe des

Antherotoma, où les fluctuations sont fréquentes. Cependant, la tétramérie

normale n’est pas nécessairement associée à des étamines homomorphes.

Ainsi, le Dissotis alpestris Taub., parfois considéré comme variété tétra¬

mère du D. irvingiana, est parmi les plus hétérostémones (PI. 1, /). Quant

aux concordances entre tétramérie et osbeckioïdie conditionnées, elles ne

peuvent être constantes, puisque le nombre de pièces florales est discontinu,

et se décide dès les premiers stades de l’organogenèse, alors que tous les

degrés de l’osbeckioïdie peuvent se réaliser au cours de la croissance. Enfin,

1. Ce genre a été rétabli par nous (Jacques-Félix, 1973).

Source : MNHN, Paris

— 412 —

la tétramérie n'est pas toujours liée à la médiocrité du développement;

ainsi, bien que toutes deux de petite taille, Antherotoma naudinii est 4-mère,

tandis que Osbeckia decandra (Smith) DC. est 5-mère.

Par contre, il existe une corrélation relative entre le développement

de la fleur et la différenciation des appendices staminaux. Les Dissolis

ont généralement de grandes fleurs, dont les étamines internes sont égale¬

ment bien différenciées, avec pédoconnectif bien appendiculé, ainsi que nous

l’avons dit plus haut; inversement, les espèces du complexe Antherotoma

ont des fleurs médiocres, hétérostaminées ou non, dont les étamines internes

sont peu différenciées, avec pédoconnectif presque nul et appendice obsolète.

En conclusion, chez les Melastomataceæ , la morphologie staminale :

allongement du connectif, dimorphisme, différenciation des appendices,

forme des anthères, etc., est affectée de variabilité, soit génétique, soit

adaptative, accentuée dans les deux cas par le mode particulier de l’estiva¬

tion de I’androcée.

E. CONVERGENCES OSBECKIOIDES ET RECHERCHE DES AFFINITÉS

RÉELLES

La solution du problème que pose l’uniformisation osbeckioïde des

types staminaux, consiste en une morphologie plus minutieuse des étamines,

permettant leur attribution aux types mieux différenciés des espèces hétéro-

stémones. De plus, une meilleure utilisation des caractères secondaires doit

faciliter le classement des espèces isostémones et spécimens osbeckioïdes.

Les caractères fournis par l’inflorescence, le nombre des pièces florales,

la caducité ou persistance des sépales, le type d’indûment, etc., sont nom¬

breux, mais se répètent, tant chez certains Dissotis que chez les Osbeckia.

De sorte que si l’on prenait l’un d’eux pour établir la dichotomie Dissotis/

Osbeckia, ce qui ne serait guère plus arbitraire que le choix du dimorphisme

staminal, c’est celui-ci qui serait qualifié de caractère ayant évolué parallèle¬

ment dans les deux genres. Ces caractères ne semblent pas combinés chez

les Osbeckia pour permettre d’établir des subdivisions; de sorte que, pour

Hansen (1977), le genre est homogène. Par contre, en raison d’une diversi¬

fication plus avancée des Osbeckieæ africaines, il est plus facile d’établir

des rapports entre les caractères végétatifs et floraux, et de reconnaître

des unités systématiques allant du genre à la section. Ainsi, les inflorescences

glomérulées, les fleurs hétérostémones, les sépales persistants, l’appendice

géminé des pédoconnectifs, et le nombre chromosomique, ont permis de

réhabiliter le genre Melastomastrum Naud. (A. & R. Fernandes, 1954) 1 .

1. Morphologie staminale : les appendices

Mieux que l’allongement ou le dimorphisme du connectif, les appen¬

dices sont un caractère discontinu et stable. De par leur existence ils per-

1. Aucune espèce de ce genre, récemment révisé (Jacques-Félix, 1974), n’a été nommée

chez les Osbeckia, et il ne nous retiendra pas davantage.

Source : MNHN, Paris

— 413 —

mettent d’opposer plusieurs genres africains aux Osbeckia. Chez ceux-ci

(Hansen, 1977), le connectif est plus ou moins épaissi circulairement sous

les thèques, avec insertion axiale du filet; le talon dorsal peut même être

vascularisé (Wilson, 1950), mais les appendices antérieurs manquent chez

les espèces proches du type. Par contre, chez les Dissolis et genres voisins,

le pédoconnectif est arqué en avant et prolongé d’un appendice, donnant

bien l’aspect d’une attache dorsale du filet, ainsi que le disait Triana

(1871). De plus, selon qu’ils sont simples ou géminés, entiers ou bilobés,

claviformes ou subulés, etc., ces appendices peuvent servir à la définition

des genres, sous-genres et sections. Si chez quelques espèces, Dissotis

thollonii, par ex., le pédoconnectif est épaissi sur le dos, la morphologie

générale de l’étamine ne peut être confondue avec celle des Osbeckia. Le

problème se pose davantage pour les formes osbeckioïdes ou espèces iso-

stémones du complexe Anlherotoma, chez lesquelles le pédoconnectif

appendiculé est plus réduit. En réalité, il suffit d’un examen attentif pour

constater que les caractères persistent, ainsi qu’il apparaît chez les formes

osbeckioïdes de D. irvingiana (PI. 1, 6) ou chez une espèce isostémone,

comme D. senegambiensis (PI. 1, 12), pour ne citer que ces deux exemples.

Ce n’est que dans les cas extrêmes d’osbeckioïdie que l’appendice bilobé

est réduit à deux tubercules.

2. ÉMERGENCES

Les émergences sont des sépalules (Chadefaud, 1955). Cette définition

a le mérite de bien établir la distinction entre ces productions, qui sont

exactement des expansions tissulaires vascularisées, propres à l’hypanthe,

et les poils, d’origine épidermique, que l’on retrouve sur les sépales, brac¬

tées et organes végétatifs. Elles sont donc normalement distribuées en

rapport avec les principaux faisceaux vasculaires, et aussi avec leurs anasto¬

moses, lorsqu’elles sont plus nombreuses. Elles se forment en ordre basipète,

de sorte que les intersépalaires sont les plus développées, les suivantes le

sont moins, et elles peuvent être réduites à de simples protubérances vers

le bas. La régression évolutive de ces éléments archaïques se fait selon

le même processus : les basales disparaissent d’abord, tandis que les calicu-

laires restent les plus constantes, subsistant parfois à l’état de lobules; leur

absence complète est rare. Selon une autre forme d’évolution, les émergences

sont exclusivement caliculaires et sépaloïdes.

Une première étude, faite par Feissly (1964), nous montre l’intérêt

systématique des émergences. Nous nous bornons, le plus souvent, à

signaler leur existence, alors qu’elles s’assortissent en plusieurs types pou¬

vant caractériser des unités supraspécifiques. Elles sont espacées ou con¬

fluentes; tubériformes, squameuses, scutellées, claviformes ou sépaloïdes;

stipitées ou non, le stipe pouvant être arrondi ou comprimé, grêle ou

épais, etc.; enfin, elles peuvent être persistantes ou caduques. Elles sont

toujours plus ou moins sétuleuses à leur apex, sauf les sépaloïdes.

Source : MNHN, Paris

— 414 —

3. Ornementation de l’hypanthe : combinaisons émergences /poils

On peut ramener à trois les types d’indûment à partir desquels il y a

évolution vers la disparition des émergences et vers la glabrescence : a) indû¬

ment sétuleux; b) indûment sétulo-velutineux; c) indûment tomento-

glanduleux.

a) Indûment sétuleux exclusif. — S’observe chez les Dissotis sect.

Dissotis, les Heterotis sect. Heterotis, et les espèces du complexe Anthero-

toma. Initialement les émergences sont en nombre défini; la surface de l’hy-

panthe et le dos des sépales sont glabrescents; l’apex épaissi des émergences

et des sépales porte des soies robustes, sclérifiées, nombreuses, hérissées.

Rarement quelques soies de même type sont dispersées entre les émergences

ou sur le dos des sépales. Lorsqu’il y a suppression évolutive des émergences

basales, les soies correspondantes sont alors directement portées par l’hy-

panthe; elles restent plus ou moins hérissées et ne masquent jamais la

surface. C’est le cas, par ex., chez Heterotis decumbens, qui tend aussi vers

la glabrescence, et chez plusieurs espèces du complexe Antherotoma, les¬

quelles n’ont souvent que des émergences intersépalaires stellatées et des

soies simples sur l’hypanthe.

b) Indûment sétulo-velutineux. — La surface de l’hypanthe et le dos

des sépales sont indumentés indépendamment des émergences sétuleuses.

On reconnaît deux types bien distincts.

Chez les Dissotis subgen. Dupineta, les émergences sont en nombre

déterminé; elles peuvent manquer sans transition chez quelques espèces

et sont totalement ou partiellement caduques chez les autres; leurs soies

apicales sont scabres à barbelées. L’indument de surface n’est jamais très

dense; il est formé de poils strigilleux, peu différents des soies apicales des

émergences.

Chez les Dissotis sect. Macrocarpæ, la surface de l’hypanthe, le corps

des émergences et le dos des sépales sont densément velutineux. Les émer¬

gences sont en nombre indéfini, et elles sont souvent dégradées depuis les

intersépalaires stipitées jusqu’aux basales tubériformes. Leur disparition pro¬

gressive au profit des soies apicales, conduit à des hypanthes densément

indumentés de poils variés. Les poils touffus, à base épaisse, dérivent des

soies apicales des émergences et des sépales. Ceux du Dissotis princeps ,

et espèces alliées, ne diffèrent guère des émergences tubériformes sétuleuses,

sauf qu’ils se retrouvent aussi sur les sépales et organes végétatifs. Des

poils squamiformes, semblables à ceux des Melastoma, caractérisent l’hy-

panthe des Dissotis sect. Squamulosæ; mais ils présentent toutes les transi¬

tions avec ceux qui sont diversement pectinés et rameux.

c) Indûment tornento-glanduleux. — Les poils capités-glanduleux micros¬

copiques (Feissly, 1964) qui existent de façon non significative chez de

nombreuses espèces, deviennent caractéristiques dans ce type d'indûment,

où ils sont diversement mélangés ou combinés à d’autres poils mous :

Source : MNHN, Paris

— 415 —

plumeux, étoilés, vermiculaires, etc. C’est seulement chez Dissotis subgen.

Paleodissotis que cet indûment est associé à des émergences tubériformes.

11 est surtout important chez les Heterotis sect. Argyrella, typiquement

dépourvus d’émergences autres que les lobules caliculaires. Enfin, parmi

les Heterotis sect. Cyciostemma, chez lesquels domine la glabrescence,

Heterotis jacquesii fait exception par les soies capito-glanduleuses de

l’hypanthe.

4. Indûment des organes végétatifs

Il y a généralement concordance entre les types de poils de l’hypanthe

et ceux des organes végétatifs, sauf en ce qui concerne la face supérieure des

limbes, dont l’indument est relativement plus indépendant. Ainsi, les poils

spéciaux : touffus, squameux, etc., observés sur l’hypanthe des Dissotis

sect. Macrocarpæ, se retrouvent sur les axes de l’inflorescence, les rameaux

et les nervures de la face inférieure des feuilles, auxquels ils donnent souvent

un aspect scabre ou squarreux. Les poils plus nettement scutelliformes,

exclusifs sur certains hypanthes, s’étendent également sur les rameaux de

plusieurs autres espèces, chez D. falcipila, par ex., où ils sont très typiques.

La concordance est encore plus évidente pour les Heterotis sect.

Argyrella et aussi Dissotis (Paleodissotis) leonensis, chez lesquels les organes

végétatifs, y compris la face supérieure des feuilles, sont revêtus du même

tomentum que celui des hypanthes.

Hormis ce dernier cas, la face supérieure du limbe porte souvent

des soies simples, qui sont la partie excurrente de plages épidermiques

linéaires, scléreuses ou cristallogènes. Les proportions varient entre ces deux

parties : parfois la plage est très développée et la soie libre est très courte;

parfois c’est l’inverse. Ces variations peuvent se produire sur de mêmes

limbes, les plages épidermiques étant souvent plus développées vers les

marges. Ce type de poils n’est donc pas absolument caractéristique. Il est

répandu chez les Osbeckia, chez de nombreux Dissotis, chez les Heterotis

sect. Heterotis, tandis que dans certains groupes les soies ne sont pas

ancrées ; chez plusieurs espèces de Dissotis sect. Macrocarpæ, elles se situent,

avec ou sans ancrage radial, à l’apex des bulles du limbe; chez D. princeps

et espèces voisines, elles ont tendance à se ramifier.

5. Nombres chromosomiques

Nous n’avons d’autres résultats que ceux de Favarger (1952, 1962).

Nous ignorons donc quels sont les nombres chromosomiques de sections

importantes et de sous-genres entiers de Dissotis: le sous-genre Osbeckiella,

dont les nombres sont probablement identiques à ceux de la sect. Dissotis;

la sect. Macrocarpæ, les sous-genres Dissotidendron et Paleodissotis, qui

pourraient bien avoir des nombres différents.

Source : MNHN, Paris

— 416 —

6. Pollen

Nous ne possédons que quelques résultats trop fragmentaires de Guers

(1969 & 1971). La palynologie devrait certainement nous apporter de

précieux arguments pour la classification générale des Osbeckieæ, moins,

peut-être, pour le strict problème Dissotis/Osbeckia.

7. Graine

Le schéma selon lequel les graines des Osbeckieæ sont cochléaires et

ornementées, supporte bien des exceptions. Celles des Dichætanthera et du

Dissotis leonensis sont cunéiformes; celles des Heterotis sect. Heterotis

sont visiblement arillées; celle de Y Heterotis entii, excellente espèce de la

sect. Cyclostemma, n’a pas du tout les caractères d’une graine d' Osbeckieæ,

etc. Malheureusement, les concordances entre caractères morphologiques

et groupes systématiques sont encore mal établies. Une étude méthodique,

comme celle appliquée à plusieurs tribus de Melastomataceæ capsulaires

américaines (Whiffin & Tomb, 1972), reste à faire pour les Osbeckieæ.

F. DOIT-ON RATTACHER LES DISSOTIS AUX OSBECKIA?

Plusieurs auteurs se sont posé la question. A. & R. Fernandes (1954,

a & b), s’appuyant sur le fait que la tendance évolutive du dimorphisme

staminal tend à supplanter l’isomorphie chez les Osbeckieæ , ont décidé

du maintien du genre Dissotis. Surtout, ils en ont conforté la position en

apportant une précision qualitative essentielle au caractère préconisé par

Triana, à savoir que le pédoconnectif est normalement appendiculé dans

ce genre, alors qu’il ne l’est pas chez les Osbeckia. Par ce moyen, la plupart

des espèces litigieuses peuvent être attribuées aux Dissotis. De plus, ces

auteurs, ayant ramené les cas d’osbeckioïdie à leur réelle signification, ont

corrigé plusieurs des attributions fautives antérieures.

G. DISSOCIATION DE DISSOTIS, GENRE POLYPHYLÉTIQUE

Favarger, à la suite de recherches cytologiques sur les Melastoma¬

taceæ ( 1952, 1962), propose une autre solution : 1) réunir au genre Osbeckia,

dont les espèces étudiées sont à n= 10 chromosomes, les espèces de Dissotis

(subgen. Dissotis ) l dont le nombre chromosomique est identique; 2) main¬

tenir dans un genre distinct celles dont les nombres chromosomiques sont

plus élevés (subgen. Heterotis et Argyrella) 1 . Ces recherches ont le grand

mérite de confirmer la composition hétérogène du genre Dissotis, et d'en

motiver le démembrement.

Cette composition polyphylétique a été excellemment traduite par

I. Les travaux de Favarger sont antérieurs aux subdivisions proposées par A. & R. Fer¬

nandes. J'ai réparti les espèces étudiées par Favarger dans les sous-genres appropriés.

Source : MNHN, Paris

— 417 —

A. & R. Fernandes (1969) qui ont établi cinq sous-genres, auxquels nous

nous référerons dans la suite. Ces subdivisions ne sont pas équivalentes;

alors que certaines sont étroitement alliées aux Osbeckia, et que le problème

de leur séparation reste délicat; d’autres, comme les sous-genres Heterotis

(Benth.) A. & R. Fern. et Argyrella (Naud.) A. & R. Fern., sont des lignées

exclusivement africaines qui ne peuvent être confondues avec les précédentes.

En conclusion, il convient de revenir à une conception plus naturelle

des genres, en se basant sur l’ensemble des caractères; puis, le problème

étant ainsi circonscrit, rechercher ce qui sépare les espèces osbeckioïdes

africaines du genre Osbeckia.

HETEROTIS Bentham

Fl. Nigrit. : 347 (1849), ex cl. sect. Leiocalyx et Wedetiopsis.

Le rétablissement de ce genre est de nature à clarifier le problème

Dissotis / Osbeckia. Selon notre concept, les sections Wedetiopsis et Leiocalyx

(= Melastomastrum Naud.) en étant exclues, il peut inclure, inversement,

le sous-genre Argyrella (Naud.) A. & R. Fern. Dans ces conditions, il

regroupe les Osbeckieæ africaines dont les nombres chromosomiques sont

de n = 15 (H. rotundifolia sect. Heterotis), n = 16 (H.jacquesii sect. Cyclo-

stemma), n = 17 (H. canescens sect. Argyrella), et il écarte celles dont le

nombre chromosomique n = 10, plus largement répandu, serait commun

aux genres Dissotis et Osbeckia, selon nos connaissances actuelles.

Les autres caractères, qui unissent les Heterotis et les opposent aux

Dissotis, sont les sépales persistants; l’appendice staminal, simple à la base,

diversement tronqué, claviforme, 2-3-lobé; etc. Il y a plusieurs types d’in-

dument, dont nous parlerons pour chacune des trois sections admises.

Le dimorphisme staminal, qui a servi de prétexte à la confusion de

ce genre avec les Dissotis, n’est pas constant. Quelques espèces et variétés

géographiques sont normalement isostémones et il y a des formes osbec¬

kioïdes. En aucun cas ces espèces ne peuvent être confondues avec des

Osbeckia, en raison des caractères qui leur sont propres. Tous les Heterotis

sont pérennes, parfois grâce à la production de tubercules vrais, complétés

ou non de bulbilles aériennes.

a) Sect. Heterotis

— Dissotis subgen. Heterotis (Benth.) A. & R. Fern., Bolm Soc. Brot., ser. 2, 53 : 286

(1969).

Espèce-type : Heterotis rotundifolia (Smith) Jac.-Fél., comb. nov.

— Osbeckia rotundifolia Smith, in Rees, Cycl. 25, Osbeckia n. 4 (1813).

Source : MNHN, Paris

— 418 —

Autres espèces :

Heterotis prostata (Thonn.) Benth.

Fl. Nigrit. : 349 (1849).

— Melastoma prostata Thonn., in Schum., Beskr. Guin. PI. : 220 (1827).

Heterotis decumbens (Pal. Beauv.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Melastoma decumbens Pal. Beauv., Fl. Oware & Bénin 1 : 69, tab. 41 (1806).

Heterotis buettneriana (Cogn. ex Buett.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Osbeckia buettneriana Cogn. ex Buett., Verh. Bot. Brandenb. 31 : 95 (1890).

Soies des feuilles avec base épidermique peu visible. Inflorescences en

cymes simples, pauciflores. Hypanthe avec émergences stipitées : nombreuses

et très sétuleuses chez H. rotundifolia ; moins chez H. prostata; souvent

réduites à un tubercule unisétacé chez H. decumbens, ou nulles, sauf les

intersépalaires, et alors les soies sont directement portées par l’hypanthe.

Pas d’autre indûment que ces soies, sauf sur la base pédicellaire. Étamines

externes caractérisées par un appendice bilobé; lobes plus ou moins dilatés;

parfois un troisième, médian et plus court. Le pédoconnectif porte souvent

un appendice dorsal peu significatif. Graines visiblement arillées; varient

de presque lisses et plus ou moins fovéolées, à profondément sulquées selon

des lignes concentriques.

Ces quelques espèces sont étroitement apparentées. Il serait possible

de les regrouper comme variétés de H. decumbens; mais la mise en syno¬

nymie ou la réduction au rang variétal du seul H. prostata n’est pas satis¬

faisante. Le rétablissement de cette espèce permet de mieux situer le Dissotis

J'ruticosa (Brenan) Brenan & Keay, qui en est probablement synonyme,

ou du moins plus proche que de H. rotundifolia. Les H. decumbens et H.

rotundifolia sont plus proches l’un de l’autre que de H. prostata, qui diffère

par sa robustesse, ses feuilles plus allongées, ses sépales caudés, etc. Quant à

H. buettneriana, il se rapproche surtout de H. decumbens par ses feuilles,

mais c’est une espèce isostémone, apparemment stable.

Cette section est la plus proche du genre Dissotis par ses émergences

et son type staminal. Ces espèces occupent les stations sub- et intra-fores-

tières de la Région guinéo-congolaise, et aussi les stations protégées des

Régions soudanienne et zambézienne. H. prostata et H. decumbens ont une

aire qui s’étend de l’ouest à l’est de l’Afrique ; elles sont adventices récentes

en Indonésie.

b) Sect. Cyclostemma Bentham

Fi. Nigrit. : 349 (1849).

Espèce-type : Heterotis antennina (Smith) Benth.

Source : MNHN, Paris

— 419 —

Parmi les nombreuses espèces qui, depuis Bentham, sont venues enrichir

la gamme des caractères de cette section, nous pouvons citer :

Heterotis cinerascens (Hutch.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Dissolis cinerascens Hutch., Kew Bull. 1921 : 372 (1921).

Heterotis pobeguinii (Hutch. & Dalz.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Dissolis pobeguinii Hutch. & Dalz., FWTA, ed. 1, 1 : 211 (1927), nomen; Kew

Bull. 1928 : 221 (1928), descr.

Heterotis rupicola (Gilg ex Engl.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Dissolis rupicola Gilg ex Engl., Pflanzenw. Afr. 3, 2 : 748 (1921).

Heterotis seretii (De Wild.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Dissolis seretii De Wild., Annls. Mus. Congo., Bot., ser. 5, 2 : 328 (1908).

Heterotis entii (J. Hall) Jac.-Fél., comb. nov.

— Dissolis entii J. Hall, Kew Bull. 24 : 346 (1970).

Heterotis pygmæa (A. Chev. & Jac.-Fél.), comb. nov.

— Dissolis pygmæa A. Chev. & Jac.-Fél., Bull. Mus. Nat. Hist. Nat., ser. 2, 4 : 685

(1932).

Soies foliaires sans base épidermique différenciée. Inflorescences en

cymes simples, parfois typiquement une seule fleur terminale. Pas d’émer¬

gences sur l’hypanthe. Seulement un ou deux verticilles de pièces caliculaires,

non sétuleuses à l’apex, membraneuses, ciliées, très remarquables chez

quelques espèces; ou émergences intersépalaires lobuliformes, ± constantes,

ou typiquement manquantes. Par ailleurs, l’hypanthe est diversement

glabre ou indumenté de poils épars, glanduleux ou non. Étamines externes

avec appendice toujours entier à la base, souvent claviforme ou spatulé,

rarement échancré ou brièvement bilobé; elles sont homomorphes et peu

différenciées chez H. pygmæa, espèce rupicole de Guinée. Graines semi-

globuleuses, avec base hilaire large; celles de H. entii sont lisses, coniques,

nettement différentes du type habituel chez les Osbeckieæ.

Section très originale, bien distincte des Dissotis, surtout diversifiée

dans l’ouest africain. Ce sont des espèces de stations intraforestières; quel¬

ques géophytes affrontent les prairies d’altitude.

c) Sect. Argyrella (Naud.) Jac.-Fél., stat. & comb. nov.

— Argyrella Naud., Ann- Sci. Nat., ser. 3, 13 : 300 (1850).

— Dissolis subgen. Argyrella (Naud.) A. & R. Fern., Bolm Soc. Brot., ser. 2, 53 : 287

(1969).

Source : MNHN, Paris

— 420 —

Esfèce-type : Heterotis canescens (E. Meyer ex Graham) Jac.-Fél.,

comb. nov.

— Osbeckia canescens E. Meyer ex Graham, Edinb. Nat. Phil. Journ. 28 : 399 (1840).

Plusieurs espèces apparentées, parmi lesquelles nous citons :

Heterotis angolensis (Cogn.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Dissotis angolensis Cogn., Mon. Phan. 7, Melast. : 371 (1891).

H. angolensis var. bambutorum (Gilg & Lederm. ex Engl.) Jac.-Fél.,

stat. & comb. nov.

— Dissotis bambutorum Gilg & Lederm. ex Engl., Pflanzenw. Afr. 3, 2 : 750 (1921).

Inflorescences paniculées. Pas d’émergences sur l’hypanthe; celles du

calice (inter- et parfois infra-sépalaires) sont lobuliformes, souvent réduites

et inconstantes, ou nulles. Indûment des organes végétatifs et de l’hypantho-

calice, formé d’un tomentum de poils mous : étoilés, plumeux, glanduleux,

vermiculaires. Appendice staminal des étamines externes, comparable à

celui de la sect. Heterotis : claviforme et plus ou moins 3-tuberculé. H. ango¬

lensis var. bambutorum est une variété isostémone d’altitude.

Cette section est très originale par son indûment. Contrairement aux

précédentes, les espèces ne sont pas forestières. Ce sont des héliophiles de

stations humides et de prairies d’altitude. L'espèce fondamentale, H. canes¬

cens, s’étend de l’Afrique du sud au Soudan. Elle s’est diversifiée sur quelques

montagnes de l’Angola, du Cameroun et de l’Ouest africain. Cette section

appartient donc à la flore paléoafricaine et n’a aucun rapport avec les

Osbeckia. A l’époque de Naudin le genre Argyrella pouvait sembler oppor¬

tun, alors que les Melastomataceæ africaines étaient encore peu connues.

Actuellement, il nous apparaît que cette unité se rattache naturellement

aux Heterotis par les espèces de la sect. Cyclostemma.

En conclusion, les Heterotis sont un genre à enchaînement. Les trois

sections, tant par leurs caractères que par leur aire géographique respective,

se séparent bien des Dissotis savanicoles, surtout répandus dans les Régions

soudanienne et zambézienne.

DISSOTIS Bentham

Fl. Nigrit. : 346 (1849).

Même allégé des Heterotis , le genre Dissotis reste formé de plusieurs

sous-genres de valeur inégale.

Source : MNHN, Paris

— 421 —

1. Dissotis subgen. Dissotidendron A. & R. Fern.

Bolm Soc. Brot., ser. 2, 43 289 (19.'9).

Ce sous-genre est bien distinct des Dissotis et pourrait en être séparé.

Toutes les espèces sont d’Afrique orientale; nous ne nous en préoccuperons

pas davantage.

2. Dissotis subgen. Paleodissotis Jac.-Fél., subgen. nov.

A specie typica frutescenti, foliorum tomento stellato, hypantho verrucoso pilis stellatis

ornato, seminibus cuneiformibus, libro intra lignum, distincta.

Espèce-type : D. leonensis Hutch. & Dalz.

C’est bien en application automatique du dimorphisme staminal que

cette espèce est attribuée aux Dissotis, car plusieurs de ses caractères sont

originaux. Les caractères anatomiques du bois 1 , typiques des Memecylon,

ne se rencontrent, chez les Melastomatoideæ, que chez cette espèce. Les

poils des feuilles sont étoilés ou plumeux. Ceux de la face supérieure des

feuilles âgées perdent leur touffe plumeuse et persistent sous forme de

petites soies hérissées, sans base épidermique linéaire. L’hypanthe est cou¬

vert d’émergences tubériformes, portant des poils étoilés, dont un plus

important au sommet (Feissly, 1964). Espèce figurée in Rev. Bot. appl. 24 :

tab. 8 (1934).

3. Dissotis subgen. Dupineta (Raf.) A. & R. Fern.

Bolm Soc. Brot., ser. 2, 43 : 288 (1969).

Espèce-type : D. multiflora (Smith) Triana.

Autres espèces : D. brazzæ Cogn., D. hensii Cogn., D. loander.sis

Exell, D. pauwelsii Jac.-Fél., D. tubulosa (Smith) Triana.

L’unité de ce taxon repose sur les caractères de l’hypanthe et des

étamines. Toutes les espèces ont un hypanthe accrescent et strigilleux;

certaines sont pourvues d’émergences régulièrement distribuées, totalement

ou partiellement caduques après l’anthèse; d’autres en sont dépourvues.

Chez D. tubulosa elles sont disposées en deux séries morphologiques bien

distinctes : les basales ont un stipe robuste, plus ou moins laminé, tronqué,

et elles sont persistantes; celles du haut ont un stipe grêle, et elles sont

caduques. L’appendice des étamines est bifide, les lobes sont obtus ou

dilatés.

I. Renseignement obligeamment fourni par D. Normand (Centre Technique Forestier

Tropical).

Source : MNHN, Paris

— 422 —

Ces quelques espèces donnent une bonne illustration de la gradation

du dimorphisme staminal. Nous avons dit plus haut que Cogniaux main¬

tenait D. multiflora comme Osbeckia, parce que les étamines sont peu

inégales, alors que leur caractère essentiel est d’être également différenciées,

celles du verticille interne ayant un pédoconnectif plus court, mais nette¬

ment appendiculé. L’attribution du D. tubulosa, dont les étamines sont

homomorphes et peu différenciées, est plus discutable. Nous avons déjà

donné l’exemple de ce Dissotis, dont les caractères staminaux découlent de

conditions préalables, qui sont ici une chambre staminale épigyne, et une

croissance accélérée. Nous nous sommes appuyé sur les caractères autres

que staminaux : forme et indûment de l’hypanthe, pour classer cette espèce

isostémone.

4. Dissotis subgen. Dissotis

Ce sous-genre, caractérisé par un appendice staminal bifide ou bipar¬

tite, a été subdivisé en plusieurs sections, dont les limites sont parfois

indécises, en raison même de la profusion des caractères. Nous proposons

quelques modifications.

a. Sect. Dissotis

Espèce-type : D. grandiflora (Smith) Benth.

Autres espèces : D. idanreensis Brenan, D. longisetosa Gilg & Lederm.

ex Engl., D. lebrunii (Rob. & Laval.) A. & R. Fern., D. elegans (Rob.

& Lawal.) A. & R. Fern., D. homblei (De Wild.) A. & R. Fern.

Nous ramenons cette section dans des limites plus étroites que celles

indiquées par A. & R. Fernandes. Les caractères en sont : émergences

régulièrement distribuées, formées d’un stipe laminé, glabre, et d’un apex

sétuleux. Hors des émergences, la surface de l’hypanthe est normalement

glabre; sépales glabrescents sur le dos, stellatés à l’apex. Cependant, on

peut observer quelques variations : émergences plus courtes et plus larges,

formant des secteurs d’anneaux ; quelques soies, de même nature que celles

des émergences, sont parfois dispersées sur la surface de l’hypanthe et le

dos des sépales.

Le dimorphisme staminal, spectaculaire chez quelques espèces, est

à peine appréciable chez d’autres espèces décrites dans le genre Osbeckia ,

mais les étamines internes ont un appendice bien caractéristique du genre.

b. Sect. Macrocarpæ A. & R. Fern.

Bolm Soc. Brot., ser. 2, 43 : 290 (1969).

Source : MNHN, Paris

— 423 —

Se distingue de la sect. Dissolis par l’indument généralisé de l’hypanthe,

des émergences et des sépales; par les émergences, parfois peu saillantes,

mais nombreuses, plus ou moins confluentes, diversement sétuleuses.

Inflorescences variables. Hypanthe de plusieurs espèces figuré par Wickens

(1975 : fig. Il & 12).

Espèce-type : D. speciosa Taub. (= D. macrocarpa Gilg).

Parmi les nombreuses autres espèces citons : D. kerslingii Gilg, D.

cryptantha Bak., D. trothæ Gilg, D. scabra Gilg.

Nous donnons à cette section un sens beaucoup plus large que celui

indiqué par d’autres auteurs, en déplaçant plusieurs espèces de la sect.

Dissotis, dont le type staminal est identique. D’une part, pour les espèces

concernées, il n’y a pas de différence essentielle entre fleurs solitaires et

fleurs paniculées. D’autre part, il y a transition entre hypanthe sétuleux

sans émergences, hypanthe avec émergences tubériformes masquées par

les soies, hypanthe avec émergences stipitées ou claviformes. D’ailleurs

il y a souvent gradation, ou variation, de ces caractères sur le même hypanthe

et chez la même espèce. Cependant, il existe une large gamme morpholo¬

gique depuis D. pachytricha R. E. Fries var. grandisquamulosa Wickens,

dont les émergences sont glabrescentes et charnues, au D. splendens A. Chev.

& Jac.-Fél., dont les émergences discoïdes sont stipitées et scabérulées. Il

serait certainement possible de distinguer des séries, ou groupes d’affinités,

d’après l’ornementation de l’hypanthe et le type de poils des organes

végétatifs. Ainsi, chez les espèces proches de D. speciosa les émergences

varient d’obsolètes à spatulées et sont pénicillées; chez celles proches de

D. denticulata les émergences sont fortement hérissées ; enfin, chez D. princeps

et espèces affines, l’indument est formé de poils touffus.

Cette section, surtout diversifiée dans la Région zambézienne, a aussi

quelques représentants en Afrique occidentale : D. barteri Hook. f., étroite¬

ment localisé sur quelques pointements rocheux de l’île Principe et du Gabon ;

D. splendens, endémique des rochers gréseux de Guinée.

c. Sect. Squamulosæ A. & R. Fern.

Bolm Soc. Brot., ser. 2, 43 : 291 (1969).

Espèce-type : D. longicaudata Cogn.

Citons parmi les autres espèces : D. sizenandii Cogn. et D. cordifolia

A. & R. Fern.

Cette section rassemble des espèces dont l’hypanthe porte des poils

squameux, entiers ou pectinés. Nous ne pensons pas qu’elle soit très oppor¬

tune. D’une part, elle se rattache à la précédente par des espèces qui pré¬

sentent ce même type de poils sur leurs organes végétatifs; d’autre part,

Source : MNHN, Paris

— 424 —

D. rhinantifolia (Bren.) A. & R. Fern. mériterait probablement une place

distincte par son type végétatif et son type staminal. Nous pensions aussi

en détacher D. thollonii Cogn. et D. louisii Jac.-Fél., dont le type staminal

est différent, sans être osbeckioïde; mais, en définitive, il semble que ces

espèces appartiennent également aux Macrocarpæ.

d. Sect. Sessilifoliæ A. & R. Fern.

Bolm Soc. Brot., ser. 2, 43 : 290 (1969).

L'spèce-type : D. welwitschii Cogn.

Autres espèces : D. anchietæ A. & R. Fern., D. gilgiana De Wild.,

D. glaberrima A. & R. Fern. (= Osbeckia brazzæi Cogn.), D. buræavi

(Cogn.) A. & R. Fern.

Cette section regroupe quelques espèces à feuilles sessiles, et ayant

une tendance à la glabrescence. Hypanthe sans autres émergences que les

intersépalaires, présentes ou non, peu ou pas sétuleuses, non stellatées.

Le type staminal montre une forte gradation du dimorphisme. Deux espèces

isostémones, placées initialement dans le genre Osbeckia , ont été rapportées

à cette section; nous en ajoutons une troisième.

Dissotis congolensis (Cogn. ex Buett.) Jac.-Fél., comb. nov.

— Osbeckia congolensis Cogn. ex Buett., Verh. Bot. Brandenb. 31 : 95 (1889).

C’est une espèce pérennante des sols frais, dont l’aire s’étend de la

Guinée à l’Afrique orientale. Les étamines sont homomorphes, avec un

pédoconnectif court, bilobé. Par une observation attentive on peut déjà

remarquer que cette conformation se distingue de celle des Osbeckia',

l’examen de nombreux spécimens permet de constater que certains sont

mieux différenciés, et que leurs caractères staminaux sont exactement

ceux du genre Dissotis (PI. 1, 17). Bien que cette espèce soit plutôt hirsute,

avec des feuilles brévipétiolées et des sépales persistants, son attribution

à la section Sessilifoliæ se justifie par les caractères de l’hypanthe. La transi¬

tion se fait par D. buræavi, espèce qui demande quelques explications.

Décrite par Cogniaux sur deux syntypes hétérogènes — dont l’un, Thollon

442, se réfère exactement à D. glaberrima —, nous avançons l’idée qu’elle

serait un hybride instable entre D. congolensis et D. glaberrima, ces plantes

occupant souvent les mêmes stations au Congo.

Note : Afin de ne pas entraîner de modifications de nomenclature,

nous maintenons le sous-genre Osbeckiella comme subdivision du genre

Dissotis, bien que nous estimions qu’il devrait en être détaché pour entrer

dans la composition d’une unité basée sur le genre Antherotoma.

Source : MNHN, Paris

— 425 —

5. Dissotis subgen. Osbeckiella A. & R. Fern.

Bolm Soc. Brot., ser. 2, 43 : 285 (1969).

Constitué de plantes souvent annuelles ou d’arbrisseaux de taille

médiocre; fleurs statistiquement plus petites que celles des autres sous-

genres de Dissotis. Surtout caractérisé par l’appendice laminé-bilobé des

étamines externes. Hypanthe variablement indumenté, selon que les émer¬

gences sont nombreuses, ou localisées vers le haut, sinon réduites aux

intersépalaires; dans ces derniers cas le; hypanthes portent des soies libres.

a. Sect. Osbeckiella

Espèce-type : Dissotis debilis (Sond.) Triana.

Autres espèces : D. phæotricha (Hochst.) Hook. f., D. gracilis Cogn.,

D. tisserantii Jac.-Fél., D. ternis A. & R. Fern.

Cette section es. bien homogène par les fleurs tétramères, en inflores¬

cences capituliformes ou réduites.

b. Sect. Senegambia Jac.-Fél., sect. nov.

A sect. Osbeckiella, cymis paniculatis velplus minusve contractis, floribus pentameris

sed interdum teIrameris, hetero- vel iso- staminatis , distincta.

Espèce-type : D. senegambiensis (Guill. & Perr.) Triana.

Autres espèces : D. irvingiana Hook., D. densiflora (Gilg) A. & R.

Fern., D. alpestris Taub. (ou D. senegambiensis var. alpestris (Taub.) A. &

R. Fern.) 1 .

Ces espèces sont habituellement classées avec celles du genre Dissotis

sect. Dissotis; mais il est bien évident que leur type staminal les apparente

aux Osbeckiella. On ne peut, par ex., séparer Dissotis irvingiana de D. phæo¬

tricha (PI. 1, 2, 8). De plus, il n’y a pas de différence précise entre des cymes

plus ou moins allongées ou contractées; il est fréquent que les espèces

pentamères aient des variétés ou formes tétramères. Enfin, si ces deux

sections rassemblent des espèces isostémones et hétérostémones, ces der¬

nières sont toutes susceptibles de présenter des formes osbeckioïdes.

Un autre caractère important est que, contrairement aux étamines

des Dissotis, normalement appendiculées sur les deux verticilles, les étamines

internes des Osbeckiella hétérostémones sont généralement très « osbeckioï¬

des », c’est-à-dire que le pédoconnectif et l’appendice sont très réduits,

comme chez D. irvingiana par ex. (PI. 1, I, 2). En conséquence, certaines

espèces isostémones, et plus encore les spécimens osbeckioïdes, cessent

1. Nous n’avons pris aucune décision sur le statut de ce taxon.

Source : MNHN, Paris

— 426 —

apparemment d’être caractérisés comme Osbeckiella, puisque l’appendice

se présente sous l’aspect de deux tubercules distincts. Mais il suffit générale¬

ment d’un examen attentif pour constater qu’il s’agit bien d’un appendice

bilobé (PI. 1, 12). Quant aux spécimens néoténiques, dont les étamines

sont totalement indifférenciées, ce sont des accommodats qu’il convient

de rapporter aux espèces normales dont ils proviennent, et non de les

considérer comme représentatifs des Osbeckia.

Les confusions sont faciles dans ce groupe entre espèces typiquement

isostémones et formes osbeckioïdes, entre Dissotis senegambiensis et D.

irvingiana par exemple. Pour nous, D. senegambiensis est une espèce isosté-

mone qui peut subir elle-même des réductions florales conditionnées. Elle

est pérennante, non rudérale, dispersée du Sénégal au Mozambique. Les

spécimens en provenance des régions orientales sont d’ailleurs souvent les

mieux différenciés (PI. 1, 13-14). On reconnaît encore D. senegambiensis

à ce que l’hypanthe porte plus souvent des soies dispersées ou en touffes

que des émergences. Quant au D. irvingiana , il est annuel, très répandu

dans l’ouest africain sur les sols perturbés : cultures, bords de route, etc.

11 peut présenter, soit des formes osbeckioïdes, dont les étamines conservent

un aspect (PL 1, 6) qui diffère de celui des étamines de D. senegambiensis

(PI. 1, 12); soit des formes néoténiques, lorsque son développement est

entravé (PI. 1, 2-5). D’après ces remarques, Osbeckia abyssinica se réfère

plutôt au Dissotis senegambiensis , tandis que D. alpestris se rapproche

davantage de D. irvingiana. Mais il est vrai que l’identification de ces

plantes reste laborieuse, et il est peut-être préférable de les regrouper,

comme l’ont fait A. & R. Fernandes (1972) et Wickens (1975).

H. COMPLEXE DES ANTHEROTOMA

Antherotoma Hook. f. est un genre de commodité, établi sur une espèce

antérieurement décrite par Naudin dans le genre Osbeckia. Certes, il est

facile d’identifier immédiatement A. naudinii Hook. f., d’après ses étamines

tronquées, à pore large, sensiblement homomorphes, avec pédoconnectif

court, médiocrement appendiculé. Curieusement, Triana (1871) conserve

ce genre, alors que, d’après le dessin qu’il en donne : ( tab. 4,fg. 43), la fleur

est nettement hétérostaminée, et qu’il place chez les Dissotis des espèces

bien plus litigieuses, comme O. senegambiensis Guill. & Perr. et O. decandra

Smith. Il est vrai que, selon les récoltes, l’appendice varie d’obsolète-bituber-

culé à franchement laminé-bilobé. Ainsi, il nous apparaît que A. naudinii

est une espèce isostaminée, identique à celles du sous-genre Osbeckiella.

Inversement, les formes osbeckioïdes des espèces hétérostémones de ce

sous-genre, celles du D. irvingiana, par ex., simulent exactement des Anthero¬

toma (PL 1, 5) et on ne peut les identifier correctement que d’après leurs

caractères végétatifs.

En conclusion, ces trois unités : le genre Antherotoma, les sections

Osbeckiella et Senegambia du genre Dissotis subgen. Osbeckiella, consti¬

tuent un groupe naturel qui se situe à la charnière des Dissotis/Osbeckia,

Source : MNHN, Paris

— 427 —

en raison d’une proportion importante d’espèces isostémones ou fréquem¬

ment osbeckioïdes. Mais, comme nous l’avons exposé plus haut, ces espèces

litigieuses conservent une morphologie staminale qui leur est propre, et

surtout elles s’identifient aux espèces spectaculairement hétérostaminées

qui font l’originalité de ce groupe. Cependant, nous ne pouvons nous ré¬

soudre à concrétiser présentement cette unité dans la classification, en

raison des trop nombreuses modifications nomenclaturales que cela entraîne¬

rait, alors que notre conviction demande à être confirmée.

I. POSITION DU GENRE OSBECK1A

Les unités taxonomiques, communes à l’Asie et à l’Afrique, sont

nombreuses. C’est le cas des Osbeckieæ qui se rencontrent dans toutes

les régions intertropicales de l’Ancien Monde. Il ne serait donc pas étonnant

que le genre Osbeckia lui-même, surtout diversifié en Asie, soit également

représenté en Afrique. Cependant, notre opinion est que les unités comprises

dans les genres Osbeckia et Dissotis, selon la définition du Généra Plantarum

(1867), ne constituent pas un seul complexe, duquel les espèces isostémones

seraient des Osbeckia et les hétérostémones des Dissotis. Bien au contraire,

nous avons reconnu : 1) que ces Osbeckieæ se divisent en plusieurs genres,

tels Meiastomastrum, Heterotis et Dissotis, de sorte qu’un genre Osbeckia,

qui en regrouperait les espèces isostémones, serait incohérent; 2) que les

Antherotoma eux-mêmes, sont une lignée distincte des Osbeckia, de ceux du

moins qui se réfèrent au type.

En d’autres termes, beaucoup des difficultés que nous éprouvons

en Afrique, tiennent à une définition trop vague du genre Osbeckia; nous

pensons que la stabilité de la nomenclature, à laquelle nous aspirons, peut

exiger parfois que des genres soient plus étroitement définis, au besoin

sur des caractères secondaires, s’ils ont l’avantage d’être discontinus. Ainsi

en Afrique, nous avons pu définir des groupements basés sur des concor¬

dances valables entre caractères secondaires et staminaux, et on peut

penser que les Osbeckia asiatiques sont également moins homogènes qu’il

n’y paraît. En effet, nous avons pris soin de préciser à plusieurs reprises,

dans ce texte, que nos comparaisons ne concernaient que les « Osbeckia

proches du type ». De petites différences staminales, qui semblent insigni¬

fiantes et dissociées au sein des Osbeckia, pourraient bien être les ébauches

de plusieurs types staminaux virtuels.

Que reste-t-il alors comme Osbeckia africains? Au terme d’une réflexion

différente de celle de A. & R. Fernandes, nous aboutissons à un résultat

sensiblement identique. Si nous n’admettons comme Osbeckia que les

espèces dont les caractères staminaux sont strictement osbeckioïdes, et

que leurs autres caractères ne permettent de rattacher à aucun des

groupes de Dissotis étudiés plus haut, nous n’en conservons guère.

Les O. decandra (Smith) DC., et O. praviantha Jac.-Fél., sont des espèces

annuelles, à étamines homomorphes, sans pédoconnectif ni appendice.

Source : MNHN, Paris

— 428 —

Ils sont donc très conformes à la définition du genre Osbeckia, mais on

pourrait, tout aussi bien, les placer en fin de série du complexe des Anthero-

toma. L’un d’eux, O. decandra a été successivement attribué au genre Disso¬

tis par Triana (1871), et au genre Antherotoma par A. & R. Fernandes

( 1954). Ces deux espèces sont endémiques des pelouses submontagnardes

de l’ouest africain.

O. porteresii Jac.-Fél. est un petit arbrisseau endémique des Mt Nimba,

remarquable par les poils glanduleux de l’hypanthe et les sépales persistants.

O. togoensis Leuenberger est un petit arbrisseau des collines du Togo,

remarquable par ses étamines en deux verticilles légèrement inégaux en

dimension, mais non dimorphes. Ces deux plantes, sans affinités entre

elles, n’entrent pas dans nos subdivisions du genre Dissotis; on ne peut pas

dire davantage qu’elles soient spécialement affines des Osbeckia proches

du type générique.

CONCLUSION

Au terme de cette étude, nous sommes parvenu à cette conviction que

les confusions entre taxa asiatiques et africains d 'Osbeckieæ sont plus

apparentes que réelles. Une morphologie staminale, intégrant tous les

caractères et tenant compte des fluctuations du dimorphisme, permet

de reconnaître que les genres Dissotis, Antherotoma et Osbeckia ont des

types staminaux distincts. Certes, les différences entre étamines d’Osbeckia

et étamines osbeckioïdes sont minimes, et pourraient être imputées à la

variabilité, si les formes osbeckioïdes ne dérivaient aussi clairement des

types hétérostaminés.

Le genre Heterotis, plusieurs sous-genres de Dissotis, et encore plu¬

sieurs sections du sous-genre Dissotis étant hors de cause, les unités afri¬

caines ayant les affinités les plus étroites avec les Osbeckia seraient la sect.

Dissotis et le complexe Antherotoma. Ce dernier pourrait être considéré

comme le plus proche, car les espèces sont souvent osbeckioïdes; en réalité,

son type staminal ne semble même pas esquissé chez les Osbeckia.

Une classification basée sur ces conceptions, rend plus cohérente

l’extension géographique des unités concernées. Par contre, elle ne facilite

pas la confection, ni l’usage, de clés dichotomiques. Nous avons seulement

tracé le concept du groupe naturel des Antherotoma, sans en affronter la

mise au point nomenclaturale. Nous n’en sommes guère qu’à l’inventaire

spécifique des Melastomataceæ africaines; c’est maintenant que peuvent

commencer les études pluridisciplinaires, nécessaires à leur classification.

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Source : MNHN, Paris

Source : MMHN, Paris

SURFACE FEATURES OF STRIGA SEEDS (SCROPHULARIACEÆ)

L. J. Musselman & C. Parker

Musselman, L. J. & Parker, C. — 27.05.1981. Surface features of Striga

seeds (Scrophulariaceæ), Adansonia, ser. 2, 20 (4) : 431-437. Paris. ISSN 0001-

804X.

Abstract : Seeds of nine species of the root parasitic genus Striga were examined

using the scanning électron microscope. Ail species hâve aereolate surfaces

with prominent ridges. These primary ridges are always ornamented with

bilobed protubérances near the crest of the ridge. Less prominent secondary

ridges run at varying angles between primary ridges. Secondary ridges may

lack ornamentation. There appears to be little corrélation between surface

features and host spécifie morphotypes although surface features may be of

some taxonomie value in certain species complexes.

Résumé : L’étude des graines de 9 espèces du genre Striga (parasite sur racines)

a été faite en microscopie électronique à balayage. Toutes les espèces ont des

surfaces aréolées à côtes saillantes. Ces côtes primaires sont toujours ornées

de protubérances bilobées près de leur crête. Des côtes secondaires, moins

proéminentes, font des angles variés entre les côtes primaires. Ces côtes secon¬

daires peuvent être dépourvues d’ornementation. Peu de corrélations entre

les caractères de surface et les morphotypes spécifiques des hôtes ont été mises

en évidence; cependant, les caractères de surface ont un intérêt taxonomique

dans certains groupes d’espèces complexes.

Lytton J. Musselman, Department of Biological Sciences, Old Dominion Uni-

versity, Norfolk, Virginia 23508, USA.

C. Parker, Agricultural Research Council Weed Research Organization, Beg-

broke Hill, Yarnton, Oxford 0X5 IPF, Great Britain.

INTRODUCTION

Striga is an old world and Australian genus of about 25 species. Ail

are obligate root parasites and include several species that are serious

pathogens of food crops. Of these, S. hermonthica, S. asiatica and S. gesne-

rioides are the most important, although other species hâve also been impli-

cated in crop losses.

There is considérable variation in morphology, size, flower colour and

host specificity in these three species. Striga asiatica and S. gesnerioides

are especially variable and hâve distinct morphotypes apparently associated

with geographical distribution and/or host preference (Musselman & al.,

1979). One objective of the présent study was to détermine if the seeds

of these morphotypes possessed distinct surface characteristics: such infor¬

mation could be useful in predicting host preference for an introduced strain.

A second objective was to produce illustrations of seeds. Previous

studies on surface features of Striga are restricted to those of Musselman

& Mann (1976) and Visser & Wentzel (1980). Striga seeds are very small

and are, therefore, idéal subjects for an SEM study.

Source : MNHN, Paris

— 432 —

PI. 1. — Striga asiatica : 1 (76-5), noie the poorly developed secondary ridges compared

wilh Fig. 4; scale = 100 ian; 2 (78-3), note the size of the protubérances of the primary

ridges compared with other strains (Figs. 4-6); scale = 50 um; 3 (79-1), general view of

seeds; a faint secondary ridge is noticcable running at acute angles to the primary ridges;

scale = 100 um; 4(77-5), in thisstrain ofthis species the secondary ridge is more pronounc-

ed;scale = 50 um;5 (78-4),the protubérances on theseed are very narrow; scale =50 um;

6 (79-1), close-up of protubérances; scale = 10 um.

Source : MNHN, Paris

— 433 —

PI. 2. — Striga densiflora (74-1): 7, detail of surface; in this species the régions between the

ridges are only sparsely orramented; scale = 50 um. — Striga euphrasioidcs (67-1): 8, this

species has very distinct surface features, especially of the secondary ridges; scale =

100 um; 9, detail of the secondary ridges showing the conspicuous protubérances; scale =

50 um. — Striga forbesii (78-3): 10, the ornamentation of the primary ridges is obscure

with short, blunt protubérances; scale = 50 um. — Striga gesnerioidcs (79-1): II, general

view; scale = 100 um; 12, note scattered protubérances on secondary ridges; scale = 50 um.

Source : MNHN, Paris

— 434 —

METHODS AND MATERIALS

Seeds used were from the parasitic seed collection of the tropical weeds laboratory

of the Weed Research Organization (WRO). Herbarium vouchers for most samples

are filed in the tropical weeds herbarium at WRO. Table 1 lists seeds examined in this

Untreated seeds were mounted with double sided cellophane tape, gold coated

in a Polaron E500 diode sputtering System and examined with a Cambridge Stereoscan

150 microscope.

RESULT AND DISCUSSION

Results are presented in figures 1-18. The shape of the seeds is in ail

cases variable. The length of the seeds is mainly 0.20-0.35 mm but S. eura-

sioides is longer, i.e. 0.50. The surface of the seeds of each Striga species

has a double System of ridges. The most prominent, here termed the pri-

mary ridge, are apparently produced by outgrowths of cells (Musselman

& Mann, 1976). These often spiral around the seed although the angle

of the individual ridges is quite variable even in the same seed sample.

A less prominent set of ridges, secondary ridges, may either run parallel

with the primary ridges (figs. 2-5, 7, 13-18) or at a distinct angle to the

primary ridges (figs. 2-4, 8, 9).

The primary ridges are always ornamented. The basic pattern is two

protubérances on each side of the crest of the ridge. Each protubérance

has two lobes, évident only under high magnification (figs. 6, 10, 12, 14,

17). The secondary ridges may also be ornamented but with protubérances

of different morphology from those of the primary ridges. This is well

illustrated in Striga euphrasioides , where the primary ridges hâve very

uniform protubérances, while those of the secondary ridges are more

uneven in size and spacing (fig. 9). The surface not covered by ridges is

only sparsely ornamented, if at ail (figs. 4, 10, 12, 15).

Only in Striga asiatica was it possible to discern différences in seed

surface features of different geographical origin. In general, seeds from

Asia hâve more highly ornamented seeds. Such seeds hâve more protu¬

bérances, and distinctly angled secondary ridges (cf. figs. 3 and 6 from Asia

with figs. 1 and 5 from the United States and South Africa). This finding

is supported by other work on the American strain (Musselman & Mann,

1976) and on the South African strain (Visser & Wentzel, 1980). It is

usually assumed that S. asiatica , discovered in the Carolinas in the United

States in the 1950s, originated from South Africa.

Unlike S. asiatica, it is not possible to distinguish the various mor¬

photypes/geographical strains of the other two wide-ranging species (S.

gesnerioides and S. hermonthica ) on the basis of seed surface features.

Strains of S. hermonthica from sorghum ( Sorghum vulgare) (fig. 15) and from

millet ( Pennisetum americanum) (fig. 16) are indistinguishable on the basis of

seed coat characteristics both having variable amounts of ornamentation,

e.g. figures 16 and 17.

Source : MNHN, Paris

— 435 —

PI. 3. — Slriga passargei (79-1): 13, in this species the protubérances are obtuse and short;

scale = 50 iim. — Striga aspera (77-1): 14, large protubérances are évident on the secon-

dary ridges and spaces between ridges. These protubérances are larger than those on the

primary ridges; scale 50 «m. — Striga hermonthica (71-11): 15, this illustrâtes One

extreme of ornamentation; in this strain, the ridges hâve only small, short protubérances;

scale = 100 um; 16 (77-25), general aspect of seeds; scale - 100 um ; 17 (77-7), primary

and secondary ridges and protubérances; scale = 10 um. — Striga parviflora (79-1):

18, note similarity to 5. asiatica (77-7); scale = 50 um.

Source : MNHN, Paris

— 436 —

TABLE 1 : SPECIES OF STRIGA, LOCATION AND HOSTS

Species

Origin

Host

WRO

Striga aspera

Sintiou-Maleme, Sénégal

(wild grasses)

77-1

(Willd.) Benlh.

Striga asiatica

Bogor, Indonesia

(wild grasses)

79-3

(L.) Kuntze

Rajasthan, India

Pennisetum

77-3

Mtwara, Tanzania

Sorghum

78-2

Bronkhorstspruit, South

Z,a

78-4

Korat, Thailand

(not known)

78-3

Pantancheru, India

Sorghum

76-3

North Carolina, USA

76-5

Akola, India

Sorghum

76-2

Karnataka, India

Sorghum

77-5

Sumatra, Indonesia

(wild grasses)

79-1

Parbhani, India

73-1

Striga densiflora

Gujarat, India

(not recorded)

7-1-1

Bcnth.

Striga euphrasioides

Lucknow, India

(not recorded)

67-1

Benth.

Striga forbesii

Zaria, Nigeria

(not recorded)

78-3

Benlh.

Striga gesnerioides

South Africa

Nicotiana

78-1

(Willd.) Watke

Bolgatanga, Ghana

Tcphrosia

Maradi, Niger

Jacquemontia

77-6

South Africa

Monsonia

77-5

Kambouinse, Upper

Volta

v * m

77-1

Maradi, Niger

Vigna

77-4

Florida, USA

Indigofera

79-1

Striga hermonthica

Sapu, Gambia

Sorghum

79-5

(Del.) Benth.

Samaru, Nigeria

Sorghum

77-38

Maradi, Niger

Pennisetum

77-4

Kordofan, Sudan

Pennisetum

74-1

Abu Naama, Sudan

Sorghum

77-25

Thiou, Upper Volta

Pennisetum

77-7

Striga passargei

Zaria, Nigeria

(wild grasses)

79-1

Benth.

Striga parviflora

Queensland, Australia

Schizachyrium

79-1

Benth.

Surface features of seeds may hâve taxonomie value. Striga euphra-

sioides seeds are distinct among those examined. This correlates well

with the distinct morphology of this species. Likewise, Striga forbesii

(fig. 10) has a distinct ridge ornamentation where the protubérances are

unequal in spacing and size. Furthermore, this species has distinctive

leaves and prefers much wetter habitats than most species.

Source : MNHN, Paris

— 437 —

Surface features may also be of value in the study of species complexes

such as the S. hermonthica I S. aspera I S. passargei group. Striga aspera

closely resembles S. hermonthica in overall morphology and is also sym-

patric with it in distribution (Musselman & al., 1979). The seeds of

S. aspera hâve prominent ornamentation of the secondary ridges (fig. 14)

where the protubérances are larger than those on the primary rigdes, as

in some strains of S. hermonthica (fig. 17). Surface features of 5. passargei

(fig. 13) are not sufficiently distinct to separate it from S. aspera or S. her¬

monthica.

Neither surface features of S. densiflora (a very distinct species in

its morphology (fig. 2), nor of the ill defined Australian species S. parvi-

flora (fig. 18) are sufficient to separate them from other species. The

seeds are, in fact, indistinguishable from S. asiatica.

Acknowledgements : This work was supported by the US Department of Agri¬

culture. Animal and Health Inspection Service, Plant Protection and Quarantine under

contract number 12-16-5-2244 — awarded to the first author. We wish to thank Mr.

David Kerr, Botany School, University of Oxford, for assistance in the SEM work.

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Source : MNHN, Paris

Source : MMHN, Paris

STERCULIACÉES ET LÊCYTHIDACÉE NOUVELLES AUX MAS¬

CAREIGNES

F. Friedmann

Friedmann, F. — 27.05.1981. Sterculiacées et Lécythidacée nouvelles aux

Mascareignes, Adansonia, ser. 2, 20 (4) : 439-449. Paris. ISSN 0001-804X.

Résumé : L'auteur décrit 5 nouveaux taxons : chez les Sterculiacées, 2 espèces

et 2 sous-espèces de Dombeya et une espèce de Trochetia ; chez les Lécythidacées,

1 espèce de Fcclidia.

Abstract: The author describes 5 new taxa: 2 species and 2 sub-species of

Dombeya and 1 species of Trochetia in the Sterculiaceæ ; 1 species of Fatidia

in the Lecythidaceæ.

Francis Friedmann, Laboratoire de Phanérogamie, 16 rue Buffon, 75005 Paris,

La révision des Sterculiacées et des Lécythidacées pour la Flore des

Mascareignes (Réunion, Maurice, Rodrigues), nous conduit à décrire des

espèces et sous-espèces nouvelles.

STERCULIACÉES

Une plante appartenant à une espèce nouvelle de Dombeya Cavanilles

a été récoltée pour la première fois à Maurice en 1976; en effet, parmi le

matériel étudié, aucun échantillon plus ancien ne correspond à cette espèce.

Dombeya mauritiana Friedmann, sp. nov.

Arbor parva foliis glabrescentibus. Inflorescentiæ cymoste. Epicalyx bracteolis tribus

angustis caducis compositus. Flores masculi 10 mm in diametro, petalis albis inæquilateralis.

Flores feminei désuni.

Type : Friedmann & Cadet 2854, île Maurice, Magenta, 5.6.1976 (holo-, PI).

Petit arbre probablement dioïque, atteignant une dizaine de mètres

de hauteur et à tronc de 20-30 cm de diamètre; écorce finement rugueuse,

gris clair. Feuilles à limbe cordé à sommet aigu, à marge faiblement dentée,

7-11 x 5-8 cm; pétiole long de 4-6 cm; des poils stellés épars sur les deux

faces du limbe, plus abondants sur les pétioles qui prennent une teinte

légèrement roussâtre. Stipules aiguës, pubescentes, longues de 5-7 mm,

très caduques. (Feuilles de jeunesse, provenant d’un rejet, ± trilobées).

Inflorescences, longues de 6-8 cm, en cymes bipares devenant irrégulières

sur les dernières ramifications; une paire de bractées subulées, pubescentes,

à chaque ramification. Epicalice formé de 3 bractéoles séparées, aiguës,

Source : MNHN, Paris

— 440 —

pubescentes, longues de 2,5-3 mm. Fleurs o d’environ 1 cm de diamètre;

sépales longs d’env. 5 mm, soudés sur 0,8 mm, couverts sur la face externe

de poils stellés ± denses; pétales blancs, longs de 5-6 mm; androcée long

d’env. 6 mm à 5 groupes de 3 étamines déhiscentes, alternant avec 5 stami-

nodes; tube staminal long d'env. 1,5 mm. Gynécée long d’env. 2 mm;

ovaire couvert d’une pubescence blanche, à 5 loges biovulées, surmonté

de 5 stigmates qui restent unis; parfois l’ovaire se développe en une capsule

d’env. 5 mm de diamètre, mais les loges ne contiennent que des ovules

avortés. Fleur v inconnue.

Ces caractères font de D. mauritiana une espèce intermédiaire entre

D. populnea Cav. et D. ferruginea Cav.

D. populnea se caractérise par son épicalice d’une seule pièce à 3 dents

obtuses qui sont les vestiges de 3 bractéoles devenues concrescentes. Chez

les plantes de La Réunion il est persistant. Sur des échantillons anciens de

l’île Maurice (où D. populnea n’a pas été retrouvé), l’épicalice est entier mais

caduc ( Bojer s.n. « D. betulifolia », K). Un des échantillons possède un

épicalice composé d’un lobe à 2 dents, séparé de la 3' dent par une incision

profonde ce qui semble représenter une soudure imparfaite des bractéoles

primitivement libres (Du Petit Thouars s.n., K). Parmi les anciennes récoltes

c’est l’échantillon qui présente le plus d’affinités avec D. mauritiana.

L’épicalice à 3 pièces libres de D. mauritiana, se retrouve chez D. ferru¬

ginea dont l’aspect du feuillage n’est pas sans rappeler D. mauritiana. Il

se distingue cependant nettement de ce dernier par son port arbustif,

ses fleurs plus petites à pétales faiblement asymétriques, son écologie (plus

hygrophile), etc.

D. mauritiana est donc intermédiaire entre D. ferruginea et les formes

mauriciennes de D. populnea. La série, qui culmine avec la forme réunion¬

naise de D. populnea (à épicalice persistant), illustre une des évolutions

possibles de l’épicalice des Dombeya, de la forme divisée vers la forme

entière. Les aptitudes écologiques évoluent parallèlement de l’hygrophilie

vers la xérophilie.

Matériel étudié : Friedmann & Cadet 2854, Magenta, 5.6.1976, P; Friedman 3105,

Magenta, 8.4.1977, P; Gueho MAU 18451, Magenta, 8.4.1977, MAU.

Un des 2 Dombeya de l’île Rodrigues a été rapporté à D. ferruginea

Cav. par Baker d’après une récolte de Balfour qui, le premier, le trouva

dans cette île. Il s’agit cependant d’une espèce différente et non encore

décrite.

Dombeya rodriguesiana Friedmann, sp. nov.

— D. ferruginea auct. non Cav. : Baker, Fl. Maur. Se>ch. : 28 (1877) p.p.; Balfour,

Bot. Rod. : 331 (1879).

Source : MNHN, Paris

— 441 —

Source : MNHN, Paris

— 442 —

Arbor dioica heterophylla, usque ad 10 m alla. Folia juvenilia anguste elliplica basi

cuneala, apice attenuata. Folia adulla 6-14 x 4-7 cm, ovato-elliptica, apice acuta basi

oblusa velpaulo cordata. Inflorescentiæ cymosx. Epicalyx bracleolis tribus liberis, ± persis¬

tent ibus. Flores masculi 8-10 mm in diametro, petalis albis falciformibus. Flores feminei

5 mm in diametro.

Type : Jauffret R 99, île Rodrigues, juill. 1940 (holo-, MAU!).

Petit arbre hétérophylle, dioïque, atteignant 10-12 m de hauteur, à

fût droit, haut de 7 m et de 25 cm de diamètre mais pouvant être ramifié

plus bas. Tiges jeunes et tous les organes en croissance couverts d’un indû¬

ment très ras de poils stellés brun-rouge. Feuilles adultes à limbe de (3,5-)

6-14 x (l,5-)4-7 cm, ovale à elliptique, obtus ou faiblement cordé à la base,

aigu au sommet, à marge entière ou faiblement crénelée; face inférieure

couverte d’un indûment dense de poils stellés très courts; face supérieure

portant d’abord des poils stellés épars, puis glabrescente; pétiole long

de 2-4(-7) cm. Feuilles de jeunesse (seuls des rejets ont été vus) étroitement

elliptiques, glabres, de 11 x 2 cm; pétiole long de 1 cm. Stipules pubescentes,

triangulaires-aiguës, de 9 x 4 mm, ± enroulées en cornet avant de tomber.

Inflorescences longues de 12-13 cm (<J) ou 5-9 cm ($) en cymes bipares

devenant irrégulières après 3-4 ramifications, à pédoncule et ramifications

robustes (surtout sur les inflorescences $), pédoncule d’environ 5 mm de

diamètre. Bractéoles ± ovales, longues de 0,8-1,3 mm, un peu éloignées

de la base du périanthe, persistantes (se retrouvant sous la capsule). Pédicelle

floral articulé juste au-dessus de l’épicalice. Fleurs 3 d’env. 8-10 mm de

diamètre; sépales pubescents, longs d’env. 4,5 mm, soudés sur environ

1 mm; pétales blancs, très asymétriques, falciformes, longs d’env. 6 mm;

androcée long d’env. 3 mm, formé soit de 5 groupes de 3 étamines alternant

avec 5 staminodes, soit de 20 étamines, les staminodes étant anthérifères;

tube staminal long d’env. 2 mm; gynécée stérile long d’env. 1,5 mm, à

ovaire à 5 loges biovulées, long de 0,6 mm environ, hirsute, surmonté de

5 stigmates libres. Fleurs $ d’env. 5 mm de diamètre; sépales longs de 3 mm,

soudés sur 0,5 mm; pétales longs de 2 mm; androcée stérile, long d’env.

1,6 mm, à 5 groupes de 3 étamines indéhiscentes alternant avec 5 staminodes

± vacuolisés; tube staminal long de 1 mm environ; gynécée long d’env.

2,5 mm, à ovaire à 5 loges biovulées, globuleux, long d’env. 1,2 mm, par¬

semé de courts poils stellés denses, roux, surmonté de 5 stigmates roses,

épais, écartés à l’anthèse; capsule de 4-5 mm de diamètre, tardivement

déhiscente (loculicide). Graines ovoïdes, longues d’environ 3 mm ; embryon

à cotylédons pliés.

L’espèce la plus affine est D. ferruginea, dont la nouvelle espèce se

distingue par son port arborescent, l’épicalice distant du calice, les pétales

falciformes, l’hétérophyllie.

D. rodriguesiana a gardé des caractères qui semblent primitifs, comme

l’épicalice non accolé au calice et l’articulation encore visible du pédicelle

floral juste au-dessus de l’épicalice.

Source : MNHN,

— 443 —

Source : MNHN, Paris

— 444 —

Matériel étudié : Appasamy MAU 18895, 31.10.1963, Grande Montagne, MAU;

Balfour s.n., août-déc. 1874, K; Bouton s.n., Ç, K; Cadet 2597, juill. 1970,2, Plaine Corail,

MAU, P, REU; Coode 4317 A, 12.12.1973, 3, Grande Montagne, MAU, K; Foresi

Department 13, oct. 1948, $, Grande Caverne Corail, MAU; 14, nov. 1948, Grande

Montagne, MAU; Friedmann 2435, mai 1974, J, Grande Montagne; 2911, août 1976,

3, Ibid .; 2924, août 1976, $, Plaine Corail, P; Guého MAU 18162, août 1976, $, Plaine

Corail, MAU; Jauffret R 61, mai 1934, MAU; OwadaUy MAU 17466, 7.8.1975, Grande

Montagne, MAU; Rémy 2, 19.11.1956, $, Cascade Mourouc, MAU; Wiehe R 59 et

R 60, 16.9.1938, Grande Montagne, MAU.

Dombeya ferruginea Cav. ( Dissert. 3 : 128, 1787), existe à La Réunion

et à Maurice. D’une île à l’autre, les plantes présentent quelques différences

dans le port, la dimension des fleurs, l’écologie. Le niveau de différenciation

est celui de 2 sous-espèces, ainsi que le suggérait R. Capuron dans une

annotation sur une planche d’herbier. Le type de l’espèce provient de

l’île Maurice et constitue la sous-espèce ferruginea (Commerson s.n., île

Maurice, holo-, P-JU!).

Dombeya ferruginea subsp. borbonica Friedmann, subsp. nov.

A subsp. ferruginea typica, floribus minoribus et habitatione (crescit 1200-2000 m

ahitudme in insula Borbonia), differt.

Type : Capuron 28236 SF, La Réunion, Bélouve, 8.2.1968 (holo-, P!).

Arbuste haut de 1-3 m. Limbes foliaires de 3,5-13 X 1,5-7 cm, à face

inférieure blanchâtre, parsemée de poils stellés roussâtres ou à indûment

roussâtre; face supérieure d’un vert grisâtre, glabrescente ; pétiole long

de 1-3 cm. Stipules subulées, longues de 2,5-5 mm, très caduques. Inflores¬

cences longues de 3-9 cm, couvertes d’un indûment ferrugineux. Bractéoles

longues de 1-2 mm. Fleurs 3 '■ sépales longs d’environ 3,5 mm, soudés

sur ± 0,5 mm, ± réfléchis vers le pédicelle; pétales longs de 3 mm également

± réfléchis; androcée long d’env. 2,5 mm à 5 groupes de 3 étamines déhis¬

centes (parfois des groupes de 4 étamines par dédoublement de l’une d’elles),

alternant avec 5 staminodes (ou 1-5 staminodes anthérifères); tube staminal

long d’env. 1 mm; les étamines en disposition rayonnante (toutes n’étant

pas dans le prolongement du tube staminal); gynécée stérile, long d'env.

2 mm. Fleurs ? restant ± fermées en coupe; sépales longs d’env. 2,5 mm;

pétales longs de 1-1,8 mm; androcée stérile, long de 1,2-1,6 mm, à 5 groupes

de 3 étamines vides, alternant avec 5 staminodes; tube staminal long d’env.

0,5 mm; gynécée long d’env. 2 mm, ovaire à 5 loges biovulées surmonté

de 5 stigmates roses longs d’env. 1 mm, récurvés. Capsule, large d’env.

5 mm, à déhiscence tardive; graine longue de2 mm. (Certains individus à

étamines déhiscentes, semblent avoir également un ovaire fertile car ils

peuvent former des fruits contenant des graines. Ces individus sont donc ■?).

Matériel étudié : Bosser 11999, mai 1957, Mafale, P ; Cadet 3992,3, Petite Plaine,

jan. 1973; 4259, Plaine des Makes, 5.5.1973; 5000, Grand Coude, 12.2.1975, P, REU;

Frappier 123, P ; Friedmann 974,3, Rivière des Remparts, 7.2.1971 ; 2765, Salazie, 8.4.1976;

Source : MNHN, Paris

— 445 —

2792, $, 2793,, J, Dos d’Ane, 13.4.1976; 2880, Cilaos, 14.6.1976; 3181, Dos d'Ane, <J,

20.7.1977; G. de l’/sle 87, Bélouve, P; Du Petit Thouars s.n.. Hauts de la Rivière du Mât,

<J, P; Richard s.n.. Mare à Poule d’eau, P.

La subsp. borbonica est une plante d’altitude que l’on trouve entre

1200 et 2000 m. Par contre la subsp. ferruginea culmine vers 800 m au sommet

des plu* hautes montagnes mauriciennes et descend jusque vers 400 m.

A part ce décalage en altitude, les 2 sous-espèces poussent dans des stations

analogues, sur des crêtes ± exposées ou des pentes bien drainées.

Dombeya aculangula Cav. ( Dissert. 3 : 123, 1787), existe à La Réunion

et à Maurice sous 2 formes suffisamment différentes pour être considérées

comme des sous-espèces. L’espèce ayant été décrite sur des échantillons

provenant de La Réunion (type : Commerson s.n., La Réunion, holo-,

P-JU!), ce sont les plantes mauriciennes qui constituent la sous-espèce

nouvelle. Les plantes de Rodrigues, encore mal connues, sont rapportées

provisoirement à cette sous-espèce.

Dombeya acutangula subsp. rosea Friedmann, subsp. nov.

A subsp. typica, præcipue habitu frutice congesto (haud in plantis senilibus ) et floribus

roseis, differt.

Type : Friedmann 2357, île Maurice, Mt Trois Mamelles, face Sud, avril 1974 (holo-,

P!).

Arbuste multicaule gardant longtemps l’aspect d’un buisson touffu,

± hémisphérique. Feuilles cordées, groupées à l’extrémité des rameaux.

Inflorescences en double cyme scorpioïde, les 2 branches ± récurvées vers

le pédoncule. Fleurs roses, hermaphrodites mais probablement autostériles,

larges de 1,5-3 cm.

Matériel étudié : Ile Maurice : Ayres s.n., K; Bijoux s.n., janv. 1924, P; Bojer

s.n., « prope monte Pouce », K; Bouton s.n., Mt Pouce; s.n., « Ile de France »; s.n.,

« hab. insul. mauritii », K; Commerson s.n., P; Coode 5051, Corps de Garde, K; Friedmann

2357, avr. 1974, Trois Mamelles; 2783, 24.4.1976, Corps de Garde, P; Grey s.n., anno

1855, K; Guého 14764 MAU, Corps de Garde; 14779 MAU, Junction Peak; 18445 MAU,

Jard. Pamplemousses; Home s.n., (3-75), K; Staub & Guého 11313 MAU, Corps de

Garde; Vaughan 118, 24.6.1924, Corps de Garde, MAU; s.n., 19.6.1939, «Près Case

Noyale », MAU. — Ile Rodrigues : Balfour s.n., août-déc. 1874, K; Friedmann 2401,

mai 1974, Cascade St Louis; 2909, 3.8.1976, ibid., P; Jauffret R 98, juill. 1940, MAU.

Dans Hortus Mauritianus, Bojer (1837) cite un Trochetia candolleana

sans en donner la moindre description. Des échantillons d’herbier de

Bojer et Bouton portent ce nom. Il s’agit d’une plante différente de T. uni-

flora DC. (Mém. Mus. Hist. Nat. Paris 10 : 107, 1823). Pourtant Bojer

met cette dernière dans la synonymie de T. candolleana ! Une étiquette

d’herbier, de la main de Bouton, porte la mention : « Trochetia candolleana

Source : MNHN, Paris

— 446 —

Boj., Hort. Mau.; d’après Bojer ce serait le T. uniflora DC., Prod. J’envoie

ci-joints des spécimens, sous le nom de T. uniflora, d’un Trochetia... qui

semble bien être une plante différente du T. candolleana Boj. ». Bouton,

contrairement à Bojer, avait donc vu qu’il y a là 2 espèces différentes.

Cependant T. candolleana Boj. est un nom illégitime et ne peut être retenu

pour cette espèce.

Trochetia boutoniana Friedmann, sp. nov.

— T. candolleana Boj., Hortus Mauritianus (1837), nom. illeg., excl. T. uniflora DC.

(Mém. Mus. Hist. Nat. Paris 10 : 107, 1823), in syn.

Frulex alabastris ( sepalis) et fructibus indumento lanalo dense leclis. Flores solitarii

5-7 cm in diametro, pelalis venosis carmineis.

Type : Friedmann, Guého & Lecordier 2935, île Maurice, 11.8.1976 (holo-, P!;

iso-, MAU!).

Arbuste haut de 2-3 m, à tronc court atteignant 20 cm d'épaisseur,

se ramifiant rapidement en nombreuses branches marquées par les cica¬

trices de feuilles. Rameaux jeunes couverts d’un indûment de poils stellés

courts, blanchâtres. Feuilles à limbe de 3-8 x 1,6-3 cm, elliptique-obovale,

± auriculé à la base; face supérieure vert-grisâtre clair, glabrescente; face

inférieure à indûment blanchâtre dense de poils composés-stellés courts,

parsemés de poils stellés bruns, plus longs, donnant un aspect ponctué

(surtout sur les feuilles jeunes); pétiole long de 1,5-3 cm, blanchâtre. Stipules

subulées, longues de 10-13 mm, caduques. Pédoncules axillaires uniflores,

réfléchis vers le bas, longs de 2-4 cm, portant à leur extrémité 2 bractées

longues d’environ 10 mm, caduques. Pédicelles longs de 5-8 mm. Epicalice

spathiforme, long d’env. 2,5 cm, formant un capuchon à sommet effilé,

± en crochet, couvert de poils composés courts mélangés à des poils bru¬

nâtres plus longs donnant un aspect ponctué. Sépales 5, longs d’env. 3,5 cm

très faiblement soudés sur 0,5 mm, couverts d’un tomentum blanchâtre

épais formé de poils composés, hyalins, longs de 1,5-2 mm. Pétales 5,

asymétriques, longs de 4,5 cm, veinés de carmin sur fond blanc, la marge

étant plus densément colorée. Présence de nectar au fond de la corolle.

Androcée long d’env. 3 cm, à 5 groupes de 3 étamines (le filet de l’une

d’elles ± soudé au staminode) alternant avec 5 staminodes longs d’env.

18 mm, faiblement ciliés; tube staminal long d'env. 13 mm, légèrement

pubescent à l’intérieur. Gynécée long d’env. 4 cm, à ovaire elliptique long

de 1 cm, densément tomenteux blanchâtre, à 5 loges à 12-14 ovules hori¬

zontaux; style long de 3 cm env., à 5 stigmates courts. Capsule globuleuse

de 1,5-2 cm de diamètre (vue immature) contenant une dizaine de graines

par loge. Graines ± prismatiques, noires.

Matériel étudié : Bouton MAU 201 ; Gordon MAU 202, 18.9.1872; A. Wiehe

MAU 17540, 20.10.1975, Morne Brabant; Lalouette MAU 18016, 30.5.1976, MAU;

Friedmann, Guého & Lecordier 2935, 11.8.1976, Morne Brabant, P, MAU.

Source : MNHN, Paris

— 447 —

Source : MNHN, Paris

— 448 —

Espèce relativement xérophile connue seulement du Morne Brabant

où il y a une petite population. L’espèce la plus affine est T. uniflora DC.,

qui s'en distingue essentiellement par la présence d'un indûment écailleux

sur les jeunes rameaux et les feuilles, l’épicalice couvert d’excroissances en

crochet, les fleurs un peu plus petites, roses et non carmin.

LÉCYTHIDACÉES

Dans Botany of Rodrigues, Balfour (1879) signale la présence dans cette

île d’un Fœtidia qu’il considère être le F. mauritiana Lamarck (existant à

La Réunion et à Maurice). Les arbres de Rodrigues s’en distinguent cepen¬

dant par plusieurs caractères importants et appartiennent à une espèce

autonome.

Fœtidia rodriguesiana Friedmann, sp. nov.

— F. mauritiana auct. non Lam. : Baker, Fl. Maur. Seych. : 120 (1877); Balfour,

Bot. Rodr. : 341 (1879).

A. F. mauritiana, foliis mugis inæquilateraiis , margine revoiuta , floribus pedicellis

graciiibus pendentibus, sepalis foiiaceis mucronatis , hasi connatis, haud reflexis post anthesin,

staminorum fiiamentis sinuosis mox marcescentibus , fructibus dependentibus, alis -4 non

recurvatis, differt.

Type : Friedmann 3377 , île Rodrigues (holo-, P!).

Arbre hétérophylle à tronc ± tortueux, atteignant environ 10 m de

hauteur et un diamètre de 70 cm (et plus). Écorce faiblement crevassée.

Rameaux ultimes (florifères) de 3-5 mm de diamètre (sur le sec). Feuillage

d’un vert sombre. Feuilles juvéniles à limbe étroitement elliptique, 5-12 x

0,7-2,5 cm, à nervure centrale rouge. Feuilles adultes obovales, 5-10 X 3-5 cm,

à marge révolutée, atténuées à la base, arrondies au sommet, faiblement

émarginées, assez nettement asymétriques. Pétiole nul. Fleurs solitaires,

± cachées entre les feuilles, ± pendantes au bout du pédicelle grêle, souple,

long de 3-4 cm, réfracté immédiatement au-dessus de son insertion; 2 brac¬

tées persistantes, aiguës, longues de 5-6 mm, au sommet du pédicelle et

au contact du réceptacle floral. Bouton floral à 4 angles ailés. Fleurs larges

de 4-5 cm, à 4 sépales vert pâle de 2,3 X 1,8 cm, foliacés, restant ± en

coupe à l’anthèse, ne devenant pas réfléchis par la suite, apiculés, ± arron¬

dis au sommet et soudés entre eux sur environ 6 mm (la commissure des

sépales à env. 6 mm du disque staminifère); 4 ailes entre le pédicelle et

la commissure des sépales. Étamines nombreuses, disposées en 4 plages

± triangulaires, oppositisépales; filets longs d’env. 15 mm restant tou¬

jours ± fripés-sinueux pendant l’anthèse, se fanant rapidement avant

de tomber. Disque peu charnu, large l’env. 8 mm, portant au centre le

style long d’env. 15 mm à 4 branches en croix longues d’env. 2 mm. Ovaire

à 4 loges, à placentas axiles, bifides, portant environ 20 ovules horizon-

Source : MNHN,

— 449 —

taux ou ± pendants. Fruits pendants, larges de 6-8 cm, constitués par

le réceptacle fibreux-lignifié, très dur, entouré des 4 sépales accrus ali-

formes, étalés (non réfractés), ne contenant souvent pas de graines bien

développées.

Matériel étudié : Bosser 22381, 15.3.1978, Cascade St Louis, P; Cadet 2435,

juill. 1970, Vallée de Grand Baie, P, REU; Friedmann 2428, mai 1974, Anse Mourouc;

2938, août 1976, Fond Mourouc; 3289, 29.11.1977, Cascade St Louis; 3377, 15.3.1978,

Cascade St Louis, P.

C’est un arbre atteignant une dizaine de mètres de hauteur, à tronc

plus tortueux que celui de F. mauritiana. Dans toute l’île Rodrigues il n’en

reste plus maintenant qu’une vingtaine d’exemplaires (?) qui ne se régénèrent

pratiquement pas. Quelques jeunes pieds ont été plantés par le Service

des Forêts de l’île.

Références bibliographiques

Baker, J. G., 1877. — Flora of Mauritius and Seychelles, 557 p., Londres.

Balfour, I. B., 1879. — Botany of Rodriguez, Phil. Trans. Roy. Soc. 168 : 303-387.

Bojer, W., 1837. — Hortus Mauritianus : 41.

Candolle, A. P. de, 1824. — Prodrome 1 : 499-500.

Cordemoy, E. J. de, 1895. — Flore de l'Ile de La Réunion, 574 p., Paris.

Source : MNHN, Paris

Source : MMHN, Paris

UNE NOUVELLE ESPÈCE POUR LE GENRE RHEKTOPHYLLUM

N.E. Brown (ARACEÆ)

C. Ntépé

Ntépé, C. — 27.05.1981. Une nouvelle espèce pour le genre Rhektophyllum

N.E. Brown (Araceæ), Adansonia, ser. 2, 20 (4) : 451-457. Paris. ISSN 0001-

804X.

Résumé : Description de Rhektophyllum camerunense Ntépé, sp. nov. localisée

au Nigeria, au Cameroun, au Gabon et différant nettement de R. mirabile

N.E. Br. par sa feuille à base d'abord tronquée puis cordée, ses racines aériennes

aplaties et pubérulentes et ses inflorescences nombreuses.

Abstract : Description of Rhektophyllum camerunense Ntépé, sp. nov. from

Nigeria, Cameroun and Gabon and differing clearly from R. mirabile N. E.

Br. by its first truncate, then cordate Ieaf base, puberulous flattened aerial

roots and numerous inflorescences.

Colette Ntépé, Laboratoire de Botanique, Faculté des Sciences, Université,

B.P. 812, Yaoundé (Cameroun).

Le genre Rhektophyllum N.E. Br. d’Afrique tropicale pouvait être

considéré jusqu’à présent comme monospécifique, avec comme seul repré¬

sentant R. mirabile N.E. Br.; De Wjldeman & Durand, en 1901, avaient

cependant déjà décrit une seconde espèce, R. congense De Wild. & T.

Durand dont la diagnose était fort voisine de celle de R. mirabile N.E. Br.

(1882), les différences essentielles reposant sur la consistance et la nervation

des feuilles; l’examen des échantillons types déposés aux herbiers de Kew,

(R. mirabile) et de Bruxelles (R. congense). ainsi que d’autres collections,

ne permet en fait de relever aucune différence valable entre les deux espèces;

R. congense De Wild. & T. Durand est donc pour nous à mettre en syno¬

nymie de R. mirabile N.E. Br. et le genre paraissait donc monospécifique,

l’espèce en cause se rencontrant ainsi du Dahomey à l’Uganda et à l’Angola.

Au cours de nombreuses excursions botaniques au Cameroun, il a

cependant été observée une autre forme de Rhektophyllum , presque toujours

mélangée à R. mirabile N.E. Br., sauf dans l’Est de l’aire de cette dernière

espèce que l’on rencontre communément dans toute la zone forestière

camerounaise. Le fait a été signalé à R. Letouzey, qui a entrepris, lors

d’une de ses missions au Cameroun, de suivre les trajets des stolons et

tiges enchevêtrées, à partir des jeunes pieds de ces deux Rhektophyllum,

qui formaient un tapis dense dans un sous-bois très clairsemé de forêt

post-culturale de la région de Kribi-Bipindi; l’enchevêtrement et cette

multiplication des deux formes pouvaient avoir été provoqués par la taille à

la machette du tapis herbacé et du sous-bois lors d’un débroussaillement en

vue de cultures. Il constata alors que les deux formes étaient parfaitement

indépendantes, bien distinctes l’une de l’autre et qu’il ne s’agissait pas

d’une même plante présentant des variations morphologiques, ce qu’il

Source : MNHN, Paris

PI. 2.-/4 gauche, Rhektoph.vllum camerunense Ntépé et R. mirabile N. E. Br., en mélange; à droite, comparaison de feuilles :

1, R. camerunense (Letouzey 8342, Cameroun); 2, R. mirabile (Halle & Le Thomas 78, Gabon).

Source : MNHN, Paris

— 454 —

avait lui-même admis jusqu’alors. L’étude comparative détaillée de la

morphologie externe des deux formes a ainsi conduit rapidement à la certi¬

tude de l’existence de deux espèces différentes de Rhektophyllum au Came¬

roun. Nous décrivons ici cette seconde espèce.

Rhektophyllum camerunense Ntépé, sp. nov.

Stirps procera primum erecta, deinde serpens. Epigsarum radicum a lue transversæ

breviores suitI, aliæ longiores præter cattlem promisse, sed omnes complanatæ, leviter

pubescenles. Peliolus amplus, profunde sidcatus cujus dimidium e vagina constat ; lamina

ovata inferne truncata tum cordata, apice obscure acuminata, primum perforata, deinde

dissecta, nervis palmatis 5-6 e basi profectis, nervis lateralibus 2-4, adscendentibus utrinque

prominentibus, nervulis minutis.

Spadicis spatha sub-viridis, crassa, convoluta, apice obtusa; pedunculus 10-25 cm

longus; inflorescentiæ terminales 6-15 quarum spatha: involutæ plerumque violacés vel

subvirides sunt ; flores faminei inferne positi, ovario obpyramidali roseo, stigmate parvo,

discoideo, sessili, candido uniloculari, ovulo anatropo in muco demerso ; flores masculi,

albi, lunati. Pars mascula, fructuosi spadicis apice, sicut prominentia constat. Baccæ obpyra-

midales, subflavæ, apice nigræ.

A Rhektophyllum mirabili N. E. Br., radicibus complanatis, foliis basi truncatis

tum cordatis, inflorescentiis plurioribus, differt.

Type : Ntépé 139, Cameroun, km 60 route Douala-Edéa, racines, feuilles, fleurs,

20.2.1980 (holo-, YA; iso-, P).

Plante d’abord dressée sur racines échasses, pouvant atteindre 50 cm

de hauteur avec une tige très courte et épaisse, ensuite rampante par un

stolon émis de son sommet et pouvant porter des pousses feuillées, enfin

grimpante et pouvant s’élever jusqu’à 30 m au-dessus du sol. Deux sortes

de racines aériennes : longues racines verticales, atteignant le sol, très plates,

1,5-2,5 (-4) cm de largeur, purébulentes, non verruqueuses, émettant des

racines crampons horizontales, plus courtes, 10-20 cm de longueur, elles

aussi aplaties et pubérulentes. Deux sortes de tiges :

— Une tige très vigoureuse, formée par la soudure de la base des pétioles,

3-6 cm de diamètre, 50 cm de hauteur au maximum.

— Un stolon, plus mince, permettant la progression de la plante soit sur

le sol, soit sur l’arbre-support.

Feuille avec pétiole (60-100 cm) profondément canaliculé , largement

engainant sur près de la moitié de sa longueur, gaine se terminant en deux

auricules arrondies; limbe, 35-150 x 25-80 cm, ovale, base largement

tronquée chez la jeune feuille, puis cordée, sommet obtus acuminé, limbe

perforé d’abord, puis se déchirant à maturité pour devenir complètement

divisé; nervation palmée avec 5-6 nervures basilaires de part et d’autre

de la nervure médiane; 2-4 paires de nervures latérales primaires bien

saillantes, alternes, ascendantes, se ramifiant chacune en nombreuses

nervures secondaires également ascendantes, réseau plus atténué et allongé

de nervures secondaires et tertiaires.

Source : MNHN, Paris

— 455

Source : MNHN, Paris

— 456 —

PI. 4. — Rhektophyllum camcruncnsc Ntépé : 1, inflorescence avec spalhe fermée x 4/9; 2,

spalhe ouverte et spadice x 2/3; 3, fleur femelle x 5; 4, infrutescence avec spathe sec¬

tionnée x 4/9; 5, Iruits x 1 . (1-3, Ntépé 4, Cameroun; 4-5, Ntépé 107 , Cameroun).

Source : MNHN, Paris

— 457 —

Inflorescences terminales, généralement nombreuses, n’apparaissant

que sur la plante grimpante à plus de 3 m du sol, exceptionnellement moins;

bractée commune vert clair ou violacée enveloppant l’ensemble des inflo¬

rescences et libérant à son ouverture un régime de 6-15 spadices axillés

chacun par une bractée aussi vert clair; spadice avec long pédoncule pouvant

atteindre 18(-25) cm, recouvert d’une spathe vert-jaunâtre, convolutée,

charnue, 10-18 cm de longueur, obtuse au sommet, l’inflorescence exsudant

un liquide rougeâtre à la cassure; fleurs $ à ovaire subobpyramidal, rose,

surmonté d’un petit stigmate blanc, discoïde, sessile; une seule loge portant

un ovule recourbé, traînée de gelée émise à partir du placenta; spadice

fructifié (9-14 x 6 cm) surmonté d’un appendice persistant (reste de la

partie S).

Les deux espèces du genre Rhektophyllum se distinguent donc en

définitive aisément par les caractères suivants :

— Feuille hastée, souvent panachée dans le jeune âge de la plante, à base

échancrée; racines aériennes peu aplaties, verruqueuses; inflorescences

peu nombreuses, 1-6; ovaire vert clair à jaune crème; spadice fructifié

trapu, non terminé par un appendice. R. mirabile

— Feuille ovale, jamais panachée dans le jeune âge de la plante, à base tronquée

puis cordée; racines aériennes aplaties et pubérulentes; inflorescences

nombreuses, 6-15; ovaire rose; spadice fructifié allongé, terminé par un

appendice . R. camerunense

notes phytogéographiques : Espèce se trouvant également au Nige¬

ria et au Gabon; au Cameroun, à l’exception de toute la région de l’Est

(où l’on ne rencontre que R. mirabile) et certainement des régions sèches

septentrionales, elle se localise dans tous les sous-bois de forêt dense

humide, souvent sur sol frais, voire humide ou marécageux, mais non

nécessairement; elle s’élève en altitude jusque vers 1000 m et se rencontre

encore dans les galeries forestières en savane.

note économique : Des racines aériennes aplaties sont extraites des

fibres utilisées pour la corderie et peut-être le tissage.

Matériel étudié : Nigeria : Onochie FHI 34829, route Calabar-Mamfe, 30 km

Nord Obun (fl-, mars;, P. — Cameroun : Letouzev 8342, Meuban, 24 km Sud Djoun

(fr., nov.), P, YA; Mcurillon CNAD 1221, F.bolowa (fl., avr.), P; Ntépé 1, Mimboman

près Yaoundé (fr., 21.1.1979) P, YA; 4, Lolodorf (fl., avr.); 16, Mougoué, km 16 route

Lolodorf-Kribi (fl., avr.) P, YA; 32, Etoug Ebé, près Yaoundé au Sud-Ouest (racines,

4.7.1979), P, YA; 40, Lindoi, 40 km Ouest-Sud-Ouest Yaoundé (feuilles), P, YA; 106,

3 km S pont sur riv. Kéllé sur route Yaoundé-Eséka, soit env. 7S km Ouest Yaoundé

(fl., déc.) P, YA; 107, 10 km Est-Nord-Est Ebodjé, près Mamelles soit env. 40 km Sud

Kribi (fr., dec.) P, YA; 139, km 60 route Douala-Edéa (fl., 20.2.1980), P, YA (type).

— Gabon : Halle 2338, Abanga, P; 4230, Belinga, P.

Bibliographie

Brown, N.E., 1882. — Journal of Botany 20 : 195, tab. 230.

De Wildeman & Durand, T., 1901. — Bulletin de l’Herbier Boissier 2 (1) : 844.

Ntépé, C., 1973. — Contribution à l'étude des Aracées du Cameroun, Thèse 3 e cycle.

Université de Strasbourg.

Source : MNHN, Paris

Source : MMHN, Paris

TABLE ALPHABÉTIQUE

DÈS NOMS D’AUTEURS DU TOME 20

Berg, C. C. — Three new African Ficus species and a comment on Ficus gnapha-

locarpa (Moraceæ).

Billiet, F. & Heine, H. — Otacanthus cœruleus Lindley, une Scrophulariacée

brésilienne naturalisée aux Iles Mascareignes et aux Seychelles. Notes taxino¬

miques, floristiques et horticoles.

Blanc, P. — Observations sur les flagelles des Araceæ.

Bogner, J. — A new species of Plesmonium (Araceæ) from Indochina.

Bosser, J. — Contribution à l’étude des Orchidaceæ de Madagascar et des Masca¬

reignes. XX.

Brunel, J. F. & Roux, J. — Phyllantheæ de Madagascar. I : à propos de deux

Phyllanthus de la sous-section Swartziani Webster.

Bullock, S. H. — Dynamics of végétative shoots of three species of Aframomum

(Zingiberaceæ) in Cameroun.

Caballé, C. — Caractères de croissance et déterminisme chorologique de la liane

Entada gigas (L.) Fawcett & Rendle (Leguminosæ-Mimosoideæ) en forêt

dense du Gabon.

Cusset, C. — Contribution à l'étude des Podostemaceæ : 6. Les genres Leiothylax

et Letestuella.

Florence, J. & Hladik, A. — Catalogue des Phanérogames et des Ptéridophytes

du Nord-Est du Gabon (Sixième liste).

Friedmann, F. — Une espèce nouvelle du genre Mimusops (Sapotaceæ) à Mada-

— Sterculiacées et Lécythidacées nouvelles aux Mascareignes.

Govindarajalu, E. — Studies in Cyperaceæ. — XIX. Novelty in Lipocarpha :

L. raynaleana and its végétative anatomy.

Guinet, Ph. & Nielsen, I. — A new combination in the genus Schleinitzia (Legu¬

minosæ-Mimosoideæ) .

Hall, J. B. — New and little-known species of Placodiscus (Sapindaceæ) in West

Hall, J. B. & Siaw D.E.K.A. — The varieties of Grewia carpinifolia Juss. (Tilia-

Hallé, N. — Lomandra insularis Schlechter : notes phyllotaxiques sur une bonne

espèce de Liliacées de Nouvelle-Calédonie.

— Données nouvelles et carpogrammes d’Orchidées canaques.

Hansen, C. — Neodriessenia membranifolia (Li) C. Hansen, comb. nov. (Melasto-

mataceæ).

Jacques-Félix, H. — Observations sur les caractères staminaux et la classification

des Osbeckieæ (Melastomataceæ) capsulaires africaines.

Jérémie, J. — Notes sur le genre Ascarina (Chloranthaceæ) en Nouvelle-Calédonie

et à Madagascar.

Kundu, B. C. & Suhita Guha. — New species and variety of the genus Menisper-

mum (Menispermaceæ).

Leroy, J.-F. — Une première étape d'Adansonia : 1960-1980.

— Nouvelles remarques sur le genre Takhtajania (Winteraceæ-Takhtajanioideæ)

Lobreau-Callen, D. — Caractères comparés du pollen des Icacinaceæ et des

Olacaceæ.

Monod, Th. — A propos du Sphenoclea zeylanica (Sphenocleaceæ).

263

297

325

305

257

393

383

309

199

235

229

439

369

165

287

339

353

321

405

273

211

147

Source : MNHN, Paris

— 460 —

Morat, Ph. — Note sur les Graminées de la Nouvelle-Calédonie. VI : Lepturo-

petium, genre nouveau endémique.377

Musselman, L. J. & Parker, C. — Surface features of Striga seeds (Scrophulariaceæ) 431

Nordal, I. & Wahlstrom, R. — A study of the genus Crinum (Amaryllidaceæ)

in Cameroun.179

Ntépé, C. — Une nouvelle espèce pour le genre Rhektophyllum N. E. Brown

(Araceæ).451

Tirel, C. — Nouvelles espèces de Sloanea (Elæocarpaceæ) en Nouvelle-Calédonie 91

Tirel, C & Raynal, J. f- — Recherches bibliographiques sur trois espèces d’Elæo-

carpus (Elæocarpaceæ). 169

Veyret, Y. — Précisions botaniques sur l’Uleiorchis ulei (Cogn.) Handro (Orchi-

daceæ).141

Vignal, Ch. — Étude histologique des Chlorideæ : II.107

Éditorial.351

Revue bibliographique. 144

Source : MMHN, Paris

TABLE APHABÉTIQUE

DES UNITÉS TAXONOMIQUES

ÉTUDIÉES OU CITÉES DANS LE TOME 20

Les noms de TRIBUS et de GENRES sont en capitales, les noms de sous-genres,

de sections, d'espèces, de variétés et de formes sont en caractères courants romains,

les noms de taxa nouveaux sont en caractères gras; les synonymes sont en italiques. Les

numéros renvoient aux numéros de pages.

La table alphabétique des unités taxonomiques étudiées dans le volume 20 a été

établie par J.-J. Floret.

ACANTHEPHIPPIUM BL, 362

vitiense Williams, 361

ACERATIUM DC.

ganitrie Hassk., 176

ADIANTUM L.

vogelii Me»., 253

AFRAMOMUM K. Schum.

danielli (Hook.f.)K. Schum., 384

giganteum K. Schum., 384, sqq.

hamburyi K. Schum., 383, sqq.

subsericeum K. Schum., 383, sqq.

AGAURIA (DC.) Hook. f., 18

ALAFIA Thou.

grandis Stapf, 239

ALBIZIA Durazz.

ferruginea Benth., 246

megaladenia Merr., 165

ALSODEIOPSIS Oliv., 38, 42, 44, 62

rubra Engl., 245

AMARYLLIS L.

jagus Thomps., 184

ornata L.f. ex Ait., 186

ornata auct., 188

zeylanica L., 186

AMORPHOPHALLUS Bl. ex Decne.

bulbifer (Roxb.) Bl. ex Decne., 325

AMPHIMAS Pierre ex Harms

ferrugineus Pierre ex Pellegr., 240

ANACOLOSA BL, 34, 36, 38, 40, 44,

sqq.

casearioides Cavaco & Keraudr., 48,

54, 84

frutescsns Bl., 48, 84

grandiflora Loes., 48, 84

griffithii Mast., 48, 84

ilicoides Mast., 48, 84

insularis Christoph., 48, 84

lutea Gillespie, 48, 84

luzionensis Merr., 48, 84

papuana Schellenb., 48, 84

pervilleana Baill., 48, 52, 54, 59, 61,

79, 80, 84

puberula Kurtz, 48, 84

uncifera Louis & Bout., 48, 54, 84

ANCYLOBOTRYS Pierre

scandens (Schum. & Thonn.) Pich., 239

ANEILEMA R. Br.

beniniense Kunth, 242

ANGYLOCALYX Taub.

oligophyllus (Bak.) Bak. f., 248

ANISOMALLON Baill., 63

ANŒCTOCHILUS BL, 366

imitans Schltr., 363

ANONIODES Schltr., 91

ANTHEROTOMA Hook. f., 405, 411,

sqq., 427, 428

naudinii Hook. f., 409, 426

ANTHOCLEISTA Afzel.

vogelii Planch., 245

ANTHOCLITANDRA (Pierre) Pich.

robustior (K. Schum.) Pich., 239

ANTHOLOMA Labill.

billardieri Vieillard, 91

haplopoda Guillaumin, 91

montana Labill., 91

ANTHONOTHA Pal. Beauv.

macrophylla Pal. Beauv., 240

ANTROCARYON Pierre

micraster A. Chev. & Guill., 239

nannanii De Wild., 239

ANTROPHIUM Kaul f.

boryanum (Willd.) Kef., 18

APHANOCALYX Oliv.

djumaensis (De Wild.) Léonard, 240

marginervatus Léonard, 240

APHANOSTYLIS Pierre

mannii (Stapf) Pierre, 239

APHLOIA (DC.) Benn., 18

Source : MNHN, Paris

— 462 —

APODOCEPHALA Bak., 18

APODOST1GMA Wilczek

pallens (Welw. ex Oliv.) Wilczek, 245

APODYTES E. Mey., 63

APPENDICULA Bl., 366

reflexa Bl., 363

APTANDRA Miers, 32, 34, 40, 44, 62,

65, 70

liriosmioides Spruce, 51, 54, 76, 86

spruceana Miers, 48, 51, 52, 76, 86

zenkeri Engl., 36, 51, 54, 76, 79, 80,

83, 86

APTANDROPSIS Ducke, 36, 40, 44, 48,

52, 58, 70, 72

discophora Ducke, 43, 86

ARD1SIA Sw.

belingaensis Taton, 248

hallei Taton, 248

lethomasei Taton, 248

mayumbensis (Good) Taton, 248

mildbraedii (Gilg & Schellenb.) Taton,

248

staudtii Gilg, 248

ARGYRELLA Naud., 411, 419, 420

ARTABOTRYS R. Br.

aurantiacus Engl., 239

ARUNDINARIA Mich., 18

ASCARINA J. R. & G. Forst.

coursii (Humb. & Cap.) Leroy & Jéré¬

mie, 278, 282, sqq.

diffusa Smith, 279, 280

lucida Hook. f., 279

sect. Madascarina Leroy & Jérémie, 282

maheshwarii Swamy, 280

marquesensis Smith, 277, 280

philippinensis Robinson, 280

rubricaulis Solms, 273, sqq., 279, 280,

283

solmsiana Schltr., 273, 277, sqq., 283,

284

swamyana Smith, 280

ASCARINOPSIS Humb. & Cap.

coursii Humb. & Cap., 273, 282

ASPLENIUM L.

apcrtum (Chr.) Chr., 18

emarginatum Pal. Beauv., 253

herpetopteris Bak., 18

ASYSTASIA Bl.

gangetica (L.) Anders., 239

BACOPA Aubl.

crenata (Pal. Beauv.) Hepper, 252

BAPHIA Afzel.

batagensis Harms, 248

capparidifolia Harms

subsp. polygalacea (Hook. f.) Brum-

mitt, 248

BECLARDIA A. Rich.

macrostachya A. Rich., 18

BERLINIA Soland. ex Benth. & Hook. f.

auriculata Benth., 240

craibiana Bak. f., 240

BERT1ERA Aubl.

adamsii (Hepper) N. Hallé, 250

BLASTUS Lour.

membranifolius Li, 321, 322

BLECHNUM L.

bakeri Chr., 18

BOLBITIS Schott

gemmifera (Hiern) Chr., 253

BOMBAX L.

buonopozense Pal. Beauv., 240

BRACHYNEMA Benth., 36, 52, 60, 65

ramiflorum Benth., 53, 75, 86

BR1DELIA Willd.

atroviridis Muell.-Arg., 244

BRUNSWIG1A Heist.

massaiana Lind. & Rod., 186

BUBBIA van Tiegh., 13

BULBOPHYLLUM Thou., 362, 367

aphanopetalum Schltr., 363

atrorubens Schltr., 363

baladeanum J. J. Smith, 363

betchei F. Muell., 363

christophersenii Williams, 357, sqq.

comptonii Rendle, 363

corythium N. Hallé, 356, 357, 363

hexarhopalos Schltr., 363

longiflorum Thou., 363

luteobracteatum J. & P., 18

ngoyense Schltr., 363

nitens J. & P., 18

occultum Thou., 18

pachyanthum Schltr., 363

pallidiflorum Schltr., 363

perrieri Schltr., 18

polyopolioides Schltr., 363

BUXUS L.

madagascaria Baill., 18

BYRSOCARPUS Schum. & Thonn.

coccineus Schum. & Thonn., 242

viridis (Gilg) Schellenb., 242

CALANTHE R. Br.

langei F. Muell., 363

triplicata (Willemet) Ames, 363

CALATOLA Standl., 63

CALLICHILIA Stapf

bequaertii De Wild., 239

Source : MNHN, Paris

— 463 —

CALOPOGONIU M Desv.

mucunoides Desv., 248

CALVOA Hook. f.

monticola A. Chev. ex Hutch. & Dalz.,

245

CALYPTROCHILUM Krânzl.

chyrstianum (Reichb. f.) Summer., 248

CAMOENSIA Welw.

brevicalyx Benth., 248

CAMPANULA L., 162

CAMPYLOSPERMUM van Tiegh.

elongatum (Oliv.) van Tiegh., 248

oliverianum (Gilg) Farron, 248

CAMPYLOSTEMON Welw.

laurentii De Wild., 245

CANTLEYA Ridl., 63

CAPURODENDRON Aubrév., 233

CARPOLOBIA G. Don

alba G. Don, 250

CASEARIA Jacq.

barteri Mast., 252

CASIMIRELLA Hassl., 63

CASSINOPSIS Sond., 63

CATHEDRA Miers, 34, 36, 40, 62, 65,

68, 70

grandiflora Loes., 54, 86

guianensis Sandw., 38, 54, 86

oblonga Sleumer, 48

rubicaulis Miers, 48

CATHORMION Hassk.

altissimum (Hook. f.) Hutch. & Dandy,

246

CATTLEYA Lindl.

galeottiana Beer, 361

CAYRATIA Juss.

ibuensis (Hook. f.) Suesseng., 253

CEIBA Mill.

pentandra (L.) Gaertn., 240

CELOSIA L.

globosa Schinz, 239

CENTAUREA L.

cyanus L., 300

CENTAUROPSIS Boj. ex DC., 18

CENTOTHECA Desv.

lappacea Desv., 244

CEPHAELIS Sw.

peduncularis Salisb-, 250

CERATOSTYLIS Bl., 364

micrantha Schltr., 363

CERCESTIS Schott

congensis Engl., 240

CHÆTOSTICHIUM Hubb., 380

CHAMÆANTHUS Schltr., 366

neocaledonicus (Rendle) N. Halle, 363

CHASALIA Comm. ex Poir.

corallifera (A. Chev. ex De Wild.)

Hepper, 250

CHAUNOCHITON Benth., 34, 36, 44,

48, 51, 58, 60, 63, 70, 72, 82

klappcri (Sagot) Ducke, 38, 45, 79, 80

loranthoides Benth., 38, 41, 86

CHLAMYDOCARYA Baill., 38, 62

anhydathoda Villiers, 245

thomsoniana Baill., 245

CH LORIS Sw., 107, 118, 123, 128, 133,

sqq.

villosa (Desf.) Pers., 108

CHLOROPHYTUM Ker-Gawl

alismifolium Bak., 245

CHRYSALIDOCARPUS Wendl.

acuminum Jum., 18

pilulifera Becc., 18

CHRYSOGLOSSUM Bl., 362

neocaledonicum Schltr., 363

CHYSIS Lindl.

lævis Lindl., 361

CISSUS L.

barbeyana De Wild. & Th. Dur., 253

barteri (Bak.) Planch., 253

gossweileri Exell & Mend., 253

CITRONELLA D. Don, 63

CLE1SOSTOMA Bl., 366

montanum (J. J. Smith) Garya, 363

CLEMATEPISTEPHIUM N. Hallé, 367

smilacifolium (Reichb. f.) N. Hallé, 363

CLERODENDRUM L., 18

bipendense Gürke, 252

capitatum (Willd.) Schum. & Thonn.,

252

schweinfurthii Gürke, 252

umbellatum Poir., 252

CNEMOPTERIS Tard.

excaudata (Bon.) Tard., 18

CNESTIS Juss.

agelæoides Schellenb., 242

gabunensis Schellenb., 242

lescrauwætii De Wild., 242

CNETOPTERIS Tard.

alboglandulosa (Bon.) Tard., 18

COCCINIA Wight & Arn.

barteri (Hook. f.) Keay, 242

CIDIOCARPUS Howard, 63

CŒLOGYNE Lindl., 367

lycastoides F. Muell. & Krânzl., 363

COIX L.

lacrima-jobi L., 244

COLA Schott & Endl.

argentea Mast., 252

heterophylla (Pal. Beauv.) Schott &

Endl., 252

marsupium K. Schum., 252

verticillata (Thonn.) Stapf ex A. Chev.,

252

Source : MNHN, Paris

— 464 —

COMBRETUM Loefl.

afzelii Engl. & Diels, 242

COMMEL1NA L.

capitata Benth., 242

longicapsa C.B. Cl., 242

COPA1FERA L.

mildbrædii Harms, 240

CORDIA L.

aurantiaca Bak., 240

stenoloba Gürke, 240

CORYBAS Salisb., 367

neocaledonicus (Schltr.) Schltr., 363

COULA Baill., 40, 42, 44, 51, 60, 63, 72

edulis Baill., 32, 35, 37, 79, 81, 86

CRINUM L.

bequærtii De Wild., 184

biflorum Bak., 192

bœhmii Bak., 187

broussonelianum Herb., 186

broussonetii (Redouté) Herb., 186

congolense De Wild., 184

corradi Chiov., 187

distichum Herb., 179, 180, 188, 189,

191, 196, 197

giganleum Andr., 184

glaucum A. Chev., 179, sqq., 185, 186,

189, 192, sqq.

humile A. Chev., 179, 180, 189, 191,

196, 197

jagus (Thomp.) Dandy, 179, sqq., 184,

sqq.

kirkii Bak., 186

koutiense A. Chev., 182

iaurentii Dur. & De Wild., 184

lituratum (Reichenb.) Ravenna, 187

massaianum (Lind. & Rod.) N.E. Br.,

187

natans Bak., 179, sqq., 187, sqq.

ornatum (L. f. ex Ait.) Bury, 186, 188

pauciflorum Bak., 188

podophyllum Bak., 184

purpurascens Herb., 179, sqq., 187, sqq.

var. anguslilobium De Wild., 182

sanderianum Bak., 186, 188

scabrum Herb., 186

spectabilis Andr., 186

suaveolens A. Chev., 184

langanyikense Bak., 187

loxicarium auct., 187

vanillodorum Welw., 184

yuccæflorum Salisb., 186, 188

zeylanicum (L.) L., 179, sqq., 186, sqq.

CROSSONEPHEL1S Baill.

uniiugatus (Pellegr.) Leenhouts, 252

CROTONOGYNE Muell.-Arg.

mannianna Muell.-Arg., 244

CRYPTOPUS Lindl.

dissectus (Bosser) Bosser, 261

elatus (Thou.) Lindl.

subsp. dissectus Bosser, 261

CRYPTOSTYLIS R. Br., 364

arachnites (BI.) Hassk., 363

CTENIUM Panz.

newtonii Hack., 244

CNEN1TIS C. Chr.

truncicola (Chr.) Ching, 18

CULCASIA Pal. Beauv.

dinklagei Engl., 240

lanceolata Engl., 240

parviflora N. E. Br., 240

sapinii De Wild., 240

saxatilis A. Chev., 240

scandens Pal. Beauv., 341

tenuifolia Engl., 240

CURUPIRA G. A. Black., 36, 44, 51,

63, 69, 72

tefeensis Black., 32, 35, 86

CUVIERA DC.

heisteriifolia Mildbr., 250

CYANASTRUM Oliv.

cordifolium Oliv., 252

CYATHULA Bl.

achyranthoides (H.B.K.) Moq., 239

prostrata (L.) BL, 239

CYCLOSORUS Link

striatus (Schum.) Ching, 253

CYL1NDROPSIS Pierre

parvifolia Pierre, 239

CYNODON Rich., 107, 128, 134, 137

dactylon (L.) Pers., 109, 113, 119, 121,

125, 135, sqq.

parodii Caro & Sanchez, 138

plectostachyus (K. Schum.) Pilg-, 138

CYNORKIS Thou.

boryana (A. Rich.) Lindl., 257

brachystachya Bosser, 259, 260

CYNOSORCH1S Thou.

stenoglossa Krânzl., 18

CYPERUS L.

renschii Boeck., 242

CYPHOSTEMMA (Planch.) Alst.

ukerewense (Gilg) Descoings

var. gabonicum Descoings, 253

DALBERGIA L. f.

afzeliana G. Don, 248

hostilis Benth., 248

saxatilis Hook. f., 248

DEGENERIA Bailey & Smith, 40

DENDROBANGIA Rusby, 63

DENDROBIUM Sw., 364, 367

arthrobulbum Krànzl., 355

camptocentrum Schltr., 363

Source : MNHN, Paris

— 465 —

chalandei (Finet) Krànzl., 355

cleistogamum Schltr., 363

subgen. Dendrobium, 353

finetianum Schltr., 363

fractiflexum Finet, 363

gracicaule F. Muell., 363

sect. Inobulbon Schltr., 353

subgen. Inobulbon (Schltr.) N. Halle,

353, 354

macrophyllum A. Rich., 363

mortii F. Muell., 355

munificum (Finet) N. Hallé, 354, 355

muricatum Finet

var. munificum Finet, 354, 355

var. muricatum, 353, 354

odontochilum Reichb. f., 363

oppositifolium (Krànzl.) N. Hallé, 363

pectinatum Finet, 363

polycladium Reichb. f., 363

sarcochilus Finet, 363

sylvanum Reichb. f., 363

vandifolium Finet, 363

virotii Guillaumin, 363

DESMODIUM Desv., 47

adscendens (Sw.) DC., 248

ramosissimum G. Don, 250

velutinum (Willd.) DC., 250

DESMOSTACHYS Planch., 36, 62

brevipes (Engl.) Sleumer, 31, 38

planchonianus Miers, 31, 38, 42, 84

tenuifolius Oliv., 31, 38, 84

DIALIUM L.

pachyphyllum Harms, 240

soyauxii Harms, 240

tassmannii Harms, 240

DICELLANDRA Hook. f.

barteri Hook. f., 245

DICHÆTANTHERA Endl., 411, 416

DICHAPETALUM Thouv.

acuminatum De Wild., 242

angolense Chod., 242

bellum Breteler, 242

dewewrei De Wild. & Th. Dur., 242

fructuosum Hiern, 244

gabonense Engl., 244

glomeratum Engl., 244

madagascariense Poir., 244

parvifolium Engl., 244

staudtii Engl., 244

witianum Breteler, 244

DICRÆIA Thou.

sect. Leiocarpodicræa Engl., 199, 200

quangensis Engl., 202

violascens Engl., 199, 207

warmingii Engl., 209

DIDYMOCARPUS Wall.

madagascariensis C.B. Cl., 18

DIDYMOCHLÆNA Desv.

microphylla (Bon.) C. Chr., 18

DIOGOA Exell & Mend., 63, 65, 70

zenkeri (Engl.) Exell & Mend., 38, 53,

86, 248

DIOSCOREOPHYLLUM Engl.

cumminsii (Stapf) Diels, 246

DIOSPYROS L.

bipindensis Gürke, 244

simulans F. White, 244

zenkeri (Gürke) F. White, 244

DIPLOCAULOBIUM Krànzl-, 364

ouhinnæ (Schltr.) Krànzl., 359, 360, 363

tipuliferum (Reichb. f.) Krànzl., 359

DIPODIUM R. Br., 362

punctatum (Smith) R. Br.

var. squamatum (G. Forst.) Finet ex

Guillaumin, 363

DISCOGLYPREMNA Prain

caloneura Prain, 244

DISCOPHORA Miers, 34, 63

DISPERIS Sw.

perrieri Schltr., 18

DISSOTIS Benth., 405

alpestris Taub., 409, 411, 425

anchietæ A. & R. Fern., 424

angolensis Cogn., 420

subgen. ArgyrellaÇNaud.) A. & R. Fern.,

416, 419,

bambuiiorum Gilg & Lederm. ex Engl.,

420

barteri Hook. f., 423

brazzæ Cogn., 411, 421

buræavi (Cogn.) A. & R. Fern., 424

cinerascens Hutch., 419

congolensis (Cogn. ex Buett.) Jac.-Fél.,

409, 424

cordifolia A. & R. Fern., 423

cryptantha Bak., 423

debilis (Sond.) Triana, 407, 425

densiflora (Gilg) A. & R. Fern., 409, 425

subgen. Dissotidendron A. & R. Fern.,

411, 415, 421

sect. Dissotis, 422, sqq.

subgen. Dissotis, 422

subgen. Dupineta (Raf.) A. & R. Fern.,

419, 421

elegans (Rob. & Lawal.) A. & R. Fern.,

409, 422

entii J. Hall, 419

gilgiana De Wild-, 424

glaberrima A. & R. Fern., 424

gracilis Cogn., 425

grandiflora (Smith) Benth., 422

hensii Cogn., 421

subgen. Heierolis (Benth.) A. & R. Fern.,

416, 417

homblei (De Wild.) A. & R. Fern., 422

idanreensis Brenan, 422

Source : MNHN, Paris

— 466 —

irvingiana Hook., 407, sqq., 411, 425,

426

kerstingii Gilg, 423

lebrunei (Rob. & Lawal.) A. & R. Fern.,

422

loandensis Exell, 421

longicaudata Cogn.. 423

longisetosa Gilg & Lederm. ex Engl.,

422

louisii Jac.-Fél., 424

macrocarpa Gilg, 423

sect. Macrocarpeæ A. & R. Fern., 414,

415

multiflora (Smith) Triana, 411, 421, 422

subgen. Osbeckiella A. & R. Fern., 424,

425

sect. Osbeckiella A. & R. Fern., 424

pachytricha Fries

var. grandisquamulosa Wickens, 423

subgen. Paleodissotis Jac.-Fél., 415, 421

pauwelsii Jac.-Fél., 421

phæotricha (Hochst.) Hook. f., 407, 409,

411, 425

pobeguini Hutch. & Dalz., 419

pygmxa A. Chev. & Jac.-Fél., 419

rhinantifolia (Bren.) A. & R. Fern., 424

rupicola Gilg ex Engl., 419

scabra Gilg, 423

sect. Senegambia Jac.-Fél., 425, 426

seretii De Wild., 419

sect. Sessilifoliæ A. & R. Fern., 424

sizenandii Cogn., 423

speciosa Taub., 423

spbndens A. Chev. & Jac.-Fél., 423

sect. Squamulosæ A. & R. Fern., 414,

423

tenuis A. & R. Fern., 425

thollonii Cogn., 413, 424

tisserantii Jac.-Fél., 408, 409, 425

trothæ Gilg, 423

tubulosa (Smith) Triana, 410, 421, 422

welwitschii Cogn., 424

wildei Jacq.-Fél., 407

DOMBEYA Cav.

acutangula Cav.

subsp. rosea Friedmann, 445

baronii Bak., 18

ferruginea Cav., 440, 442

subsp. borbonica Friedmann, 444, 445

subsp. ferruginea, 445

mauritiana Friedmann, 439, sqq.

populnea Cav., 440, 441

rodriguesiana Friedmann, 441, sqq.

DONELLA Pierre

pruniformis (Pierre ex Engl.) Aubrév.

& Pellegr., 252

DORSTENIA L., 249

elliptica Bureau, 246

psilurus Welw., 246

DRACÆNA Vand. ex L.

camerooniana Bak., 245

capitulifera De Wild., 245

gabonica Hua, 245

phrynioides Hook. f., 245

DRIMYS J. R. & G. Forst.

DROGUET1A Gaudich.

leptostachys (Juss.) Wedd., 18

DRYMOANTHUS Nichols., 366

minimus (Schltr.) Garay, 367

DRYOPTERIS Adans.

remotipinnulata Bon., 18

subcrenulata (Bal.) Chr., 18

DRYPETES Vahl

laciniata Hutch., 244

EARINA Lindl., 362, 366

deplanchei Reichb. f., 367

floripecten Krânzl., 367

valida Reichb. f., 367

ECHINOCARPUS Bl., 91

ELÆOCARPUS L.

adenophyllus Wall., 175

angustifolius Bl., 169, 175, 176

cyanocarpus Maingay ex Mast., 176

ganitrus Roxb., 176

glandulosus Wall, ex Merr., 169, 175

monogynus Murray, 172, 175

oblongus Gaertn., 175

obbngus auct., 169, 174, 175

perim-kara A. DC., 175

persicifolius Brongn. & Gris, 176

serratus L., 169, 170, 172, 174, 175

sphæricus (Gaertn.) K. Schum., 169, 175,

176

ELAPHOGLOSSUM Schott

coriaceum Bon., 18

deckenii (Kühn.) Chr., 18

ELATOSTEMA Gaudich.

goudotianum Wedd., 18

ELEUSINE Gaertn., 131, 139

ELYTRARIA Mich.

marginata Vahl, 239

EMMOTUM Desv., 63

ENGLERINA van Tiegh.

gabonensis (Engl.) Engl., 245

ENTADA Adans.

gigas (L.) Fawcett & Rendle, 309, sqq.

ENTEROPOGON Nees, 107, 123, 128,

134, 137, 138

macrostachyus (A. Rich.) Benth., 109,

113, 114, 121, 135, 136

EPHEMERANTHA Hunt & Summerh.,

364

Source : MNHN, Paris

— 467 —

comata (Bl.) Hunt & Summerh., 367

ERIA Lindl., 362

æridostachya Reichb. f. ex Lindl., 367

karicouyensis Schlir., 355, 367

ERIOCŒLUM Hook. f.

racemosum Bak., 252

ERITRICHUM Schrad.

nanum (L.) Schrad. ex Gaud., 300

ERYTHROXYLUM P. Br., 18

EUGENIA L.

phillyreæfolia Bak., 18

EULOPHIA R. Br. ex Lindl., 365

euglossa (Reichb. f.) Reichb. f., 248

moratii N. Hallé, 367

pulchra (Thou.) Lindl., 367

FAGARA L.

bouetensis Pierre ex Letouzey, 252

clæssensii De Wild., 251, 252

rubescens (Planch. ex Hook. f.) Engl.,

252

FARQUHARIA Slapf

elliptica Stapf, 239

FAUREA Harv., 18

FICUS L.

abscondita Berg, 263, sqq., 270

arcuato-nervata Hutch., 263

ardisioides Warb., 263

barteri Sprague, 246, 247

subgen. Bibracleatæ Mildbr. & Burr.,

263

bubu Warb., 246

burretiana Mildbr. & Hutch., 246

camptoneura Mildbr., 271

capensis Thunb., 248, 271

conraui Warb., 246, 247, 263, 271

crassicosta De Wild., 263

craterostoma Warb., 243, 246

cyathistipula Warb., 246, 247

sect. Cyathistipulæ Mildbr. & Burr., 263

cyathistipulata Warb., 270

cyathistipuloides De Wild., 246, 270

densistipulata De Wild., 246, 270

dryepondtiana De Wild., 246

elasticoides De Wild., 246

elegans (Miq.) Miq., 246

epiphylica De Wild., 263

sect. Galoglychia (Gasp.) Endl., 263

gnaphalocarpa (Miq.) A. Rich., 263,

271, 272

kamerunensis Mildbr. & Burret, 246

kirkii Hutch., 263

leprieuri Miq., 246

lutea Vahl, 246

louisii Bout. & Léonard, 246

lyrata Warb., 263, 270

macrosperma Mildbr. & Burret, 246

mangiferoides Hutch., 246

mucuso Ficalho, 246, 271

natalensis Hochst., 243, 246

oresbia Berg, 263, 266, 267, 270

ottonifolia (Miq.) Miq., 241, 246

preussii Warb., 246, 266, 270, 271

pringsheimiana Braun & K. Schum.,

271

sagittifolia Mildbr. & Burr., 268, 270

scott-elliotii Mildbr. & Burr., 263

subcostata De Wild., 246, 247, 270, 271

subsagittifolia Mildbr. ex Berg, 246, 263,

268, 269, sqq.

sur Forssk., 248, 271

sycomorus L., 263, 271

subsp. gnaphalocarpa (Miq.) Berg, 272

subgen. Urostigma (Gasp.) Miq., 263

variifolia Warb., 248

vogeliana (Miq.) Miq., 248

vogelii (Miq.) Miq., 246

wildemaniana Warb., 248, 266, 270

FŒTIDIA Comm. ex Lam., 439

mauritiana Lam., 448, 449

mauritiana auct., 448

rodriguesiana Friedmann, 447, 448

FORRESTIA A. Rich.

tenuis (C.B. Cl.) Benth., 242

FREYC1NETIA Gaudich., 337

GALEARIA Zoll. & Mor., 34

GANITRUS Gaertn.

sphæricus Gaertn., 172, 174, 175

sphæricus auct., 176

GASTROLEPIS van Tiegh., 63

GEODORUM G. Jacks., 365

pictum Lindl., 367

GERBERA L. ex Cass.

perrieri Humbert, 18

GIGASIPHON Drake del Cast.

gossweileri (Bak. f.) Torre & Hillcoat,

240

GLOMERA Bl., 364

macdonaldii (Schltr.) Ames, 367

GLORIOSA L.

superba L., 245, 249

GNETUM L.

africanum Welw., 244

bucholzianum Engl., 244

GOMPHANDRA Wall, ex Lindl., 12, 46,

GONATANTHUS Klotzsch, 325

GONATOSTYLIS Schltr., 366

vieillardii (Reichb. f.) Schltr., 367

Source : MNHN, Paris

— 468 —

GONGRONEMA (Endl.) Decne.

latifolium Benth., 240

GONOCARYUM Miq., 32, 36, 44, 63

GOODYERA R. Br., 366

scripla (Reichb. f.) Schltr., 367

GRAMMITIS Sw.

gilpinæ (Bak.) Tard., 18

GRAVESIA Naud.

magnifolia H. Perr., 18

rubra (J. & P.) H. Perr., 18

GREWIA L.

carpinifolia Juss.

var. carpinifolia, 339, sqq.

var. rowlandii (K. Schum.) Burret,

339, sqq.

var. herniana Burret, 339, 340, 346

flavescens Juss., 346

forbesii Harv. ex Mast., 346

megalocarpa Juss., 340, 341

rowlandii K. Schum., 343

rugosifolia De Wild., 346

GR1SOLLEA Baill., 63

GUIBOURTIA Benn.

demeusei (Harms) Léonard, 240

GYMNADENIA R. Br.

boryana A. Rich., 257

HABENARIA Willd.

procera (Sw.) Lindl., 248

HÆMANTHUS L., 197

HARMANDIA Pierre ex Baill., 34, 52, 62,

mekongensis Baill., 48, 76, 86

HARTEYA Sleumer, 63

HARUNGANA Lam.

madagascariensis Choisy, 385

HEISTERIA Jacq., 36, 40, 63, 68, 69,

72, 82

acuminata (H.B.K.) Engl-, 32, 51, 86

amazonica Sleumer, 32, 51, 52, 86

brasiliensis Engl., 32, 41, 52, 86

citrifolia Engl., 32, 52, 86

cyanocarpa Poepp. & Engl., 32, 51, 86

densifrons Engl., 32, 51, 52, 69, 70, 79,

laxiflora Engl., 32, 41,52, 86

micrantha Huber, 32, 52, 86

microcalvx Sagot, 32, 41, 50, 86

minor Glaz., 32, 41, 52, 86

ovata Benth., 32,41, 52, 86

pallida Engl., 32, 50, 51,79, 86

parvifolia Sm., 32, 41, 43 , 52, 80, 86

pentandra Engl., 32, 51, 86

scandens Ducke, 32, 51, 86

silvanii Schwacke, 32, 41, 52, 79

spruceana Engl., 32, 52, 86

surinamensis Amsh., 32, 52, 86

zimmereri Engl., 32, 52, 86

HELICHRYSUM Mill.

abietifolium H. Humb., 18

lanuginosum H. Humb., 18

HELICONIA L., 391

HEMANDRADENIA Stapf

mannii Stapf, 242

HETÆR1A Bl., 366, 367

HETEROMORPHA Cham. & Schldl., 18

HETEROTIS Benth., 405, 411, 413

angolensis (Cogn.) Jac.-Fél.

var. angolensis, 420

var. bambutorum (Gilg. & Lederm. ex

Engl.) Jac.-Fél., 420

antennina (Smith) Benth-, 418

sect. Argyrella (Naud.) Jac.-Fél., 415,

419

buettneriana (Cogn. ex Buett.) Jac.-Fél.,

418

canescens (E. Meyer ex Graham) Jac.-

Fél., 420

cinerascens (Hutch.) Jac.-Fél., 419

sect. Cyclostemma Benth., 415, 416,

418

decumbens (Pal. Beauv.) Jac.-Fél., 414

entii (J. Hall) Jac.-Fél., 416, 419

sect. Heterotis, 414, sqq.

pobeguinii (Hutch. & Dalz.) Jac.-Fél.,

419

prostrata (Thonn.) Benth., 418

pygmæ (A. Chev. & Jac.-Fél.) Jac.-

Fél., 419

rotundifolia (Smith) Jac.-Fél., 417, 418

rupicola (Gilg ex Engl.) Jac.-Fél., 419

seretii (De Wild.) Jac.-Fél., 419

HOMALIUM Jacq.

africanum (Hook. f.) Benth., 252

longistylum Aubrév., 252

HOSIEA Hemsl. & Wilson, 62

HOVEA R. Br.

celsii Bonpl., 299

HUGONIA L.

planchonii Hook. f., 245

HUM1RIANTHERA Huber., 62

HUNTERIA Roxb.

camerunensis K. Schum. & Hall, f.,

239

HUPERZIA Bernh.

cavifolia (Chr.) Tard., 18

obtusifolia (Sw.) Rothm., 18

ophioglossoides (Lam.) Rothm., 18

pecten (Bak.) Tard., 18

perrieriana Tard., 19

squarrosa (G. Forst.) Trev., 18

verticillata (L. f.) Trev., 18

Source : MNHN, Paris

- 469 —

HYLODENDRON Taub.

gabunensc Taub., 240

HYMENOCOLEUS Robbrecht

libericus (A. Chev. ex Hutch. & Dalz.)

Robbrecht, 250

HYMENOPHYLLUM Sm.

parvum Chr., 18

perrieri Tard., 19

polyanthos V. de B., 18

HYPOLYTRUM Rich.

heteromorphum Nelmes, 242

pynærtii (De Wild.) Nelmes, 242

ICACINA A. Juss., 62

1LEX L.

mitis (L.) Radl., 18

IMBRICAR1A Com. ex Juss.

commersonii G. Don, 229

IMPATIENS L., 303

INDIGOFERA L., 436

INOBULBON (Schltr.) Schltr. & Krànzl.,

353

IODES Bl., 36, 52

seretti (De Wild.) Bout., 245

IRVINGBAILEYA Howard, 63

ISACHNE R. Br.

buettneri Hack., 244

JACQUEMONTIA Choisy, 436

JUMELLEA Schltr.

major Schltr., 18

JUSTICIA L.

extensa Anders., 239

KRALIKIA Coss. & Dur., 380

KRAMERIA L. ex Loefl., 82

LÆLIA Lindl.

perrinii Batem.

var. major Lindl., 361

LANDOLPHIA Pal. Beauv.

owariensis Pal. Beauv., 239

parvifolia K. Schum., 239

LASIANTHERA Pal. Beauv., 34, 47, 48,

LAVIGERIA Pierre, 62

LECANIODISCUS Planch. ex Benth., 288

LEEUWENBERGIA Letouzey & N.

Hallé

africana Letouzey & N. Hallé, 244

LEIOCARPODICRÆA (Engl.) Engl., 202

buesgenii Engl-, 199, 204

edeensis Engl., 199, 204

quangensis (Engl.) Engl., 199, 202

sphærocarpa Engl., 199

violascens (Engl.) Engl., 207

warmingii (Engl.) Engl., 199, 209

LEIOTHYLAX Warming, 199, 200, 202

buesgenii (Engl.) Engl., 200, 204

callewaertii Tayl. ex C. Cusset, 201,

202, 205, 206

drummondii C. Cusset, 202, 203, 204

edeensis (Engl.) Engl., 200, 204

penicillioides A. Chev., 207

quangensis (Engl.) Warm., 199, 200, 202

var. longifolia Haum., 204

schlechteri (Engl.) C. Cusset, 200

sessilis A. Chev., 207

sphærocarpa (Engl.) Engl., 200, 207

sphærocarpa auct., 209

violascens (Engl.) Wright, 207

warmingii (Engl.) Warm., 199, 200, 201,

209

warmingii auct., 209

LEPTAULUS Benth., 47, 48, 63

zenkeri Engl., 245, 251

LEPTODERRIS Dunn.

congolensis (De Wild.) Dunn., 250

LEPTURELLA Stapf

aristata Stapf, 380

LEPTUROPETIUM Morat

kuniense Morat, 377, sqq.

LEPTURUS R. Br.

repens (Forst.) R. Br., 380

LERETIA Vell., 62

LETESTUELLA Tayl., 199, 201, 207

chevalieri Tayl., 201, 209

tisserantii G. Taylor, 201, 208, 209

warmingii (Engl.) Warm., 201

LEUCÆNA Benth.

forsteri Benth., 165

insularum (Guill.) Dàniker

var. guamensis Fosberg, 165

LINDERNIA Ail.

diffusa (L.) Wettst., 252

LINDSÆA Dryand. & Sm.

ensifolia Sw., 253

LIPARIS Rich., 366

cæspitosa Lindl., 359

gibbosa Finet, 367

indifferens J. J. Smith, 367

layardii F. Muell., 367

laxa Schltr., 367

phalacrocorax N. Hallé, 367

Source : MNHN, Paris

— 470 —

LIPOCARPHA R. Br.

raynaleana Govindarajalu, 369, sqq.

sphacelata (Vahl) Kunth, 370, 374

LIRIOSMA Poepp. & Enbdl., 36,40,42,

44, 48, 52, 60, 62, 65

acuta Miers, 66, 70, 74, 86

crassa Monach., 86

guianensis Engl., 66, 86

singularis (Vell.) Mackr., 66, 86

LOBELIA L., 162

hartlandii Buchenan, 18

LŒSENER1ELLA A. C. Sm.

apocynoides (Welw. ex Oliv.) N. Hallé

ex J. Rayn., 245

LOMANDRA Labill.

banksii (R. Br.) Ewart, 21,23, 34, 26, 27

insularis Schltr., 21, sqq.

LONCHIT1S L.

pubescens Willd. ex Klf., 18

LONCHOCARPUS Kunth

griffonianus (Baill.) Dunn., 250

LUDWIGIA L., 46

octovalis (Jacq.) P. Raven, 248

LYCOPODIUM L.

cernum L., 253

MACARANGA Thou., 385

MACROPODIELLA Engl.

heteromorpha (Baill.) C. Cusset, 250

MALAXIS Soland. ex Sw.

taurina (Reichb. f.) Kuntze, 367

MALLOTUS Lour.

oppositifolius (Geisel.) Muell.-Arg., 244

MAPPIA Jacq., 40, 62

MAPPIANTHUS Hand.-Mazz., 42, 44,

MAPROUNEA Aubl.

membranacea Pax & K. Hoffm., 244

MARANTHES Bl.

aubrevillei (Pellegr.) Prance, 242

glabra (Oliv.) Prance, 242

MARISCUS Vahl

cylindristachyus Steud., 242

tenuis (Sw.) C.B. CL, 242

MEDIN1LLA Gaudich.

falcata H. Perr., 18

parvifolia Bak., 18

MEDUSANTHERA Seem., 34, 63

MEGAPHRYNIUM Milne-Redh.

velutinum (Bak. f.) Koechlin, 391

MEGASTYLIS Schltr.

gigas (Reichb. f.) Schltr., 367

glandulosa (Schltr.) Schltr., 367

montana (Schltr.) Schltr., 368

rara (Schltr.) Schltr., 368

MELASTOMA L., 414

decumbens Pal. Bcauv., 418

prostrata Thonn., 418

MELASTOMASTRUM Naud., 411, 417,

426

segregatum (Benth.) A. & R. Fern., 245

MEMECYLON L.

laurentii De Wild-, 245

MENISPERMUM L.

canadense L., 211, 214, 216, 220, sqq.

chinensis Kundu & Guha, 211,212, 217.

sqq.

dahuricum DC., 211, 212, 214, 216,

220, sqq.

var. mexicanum (Rose) Kundu &

Guha, 211, 223, 225

mexicanum Rose, 211, 225

miersii Kundu & Guha, 211, sqq., 216,

225, sqq.

MERR1LLIODENDRON Kanehira, 62

MICROCHLOA R. Br., 107, 133, 134,

136, 137

abyssinica Hochst. ex A. Rich., 130

caffra Nees, 130, 138

indica (L.) Pal. Beauv., 109, 113, 125,

131, 132, 135, 139

M1CRODESMIS Hook. f., 32

camerunensis Léonard, 248

pierlotiana Léonard, 248

MICROTATORCH1S Schltr., 366

schlechteri Garay, 368

oreophila Schltr., 368

MILLETTIA Wight & Am.

barteri (Benth.) Dunn., 250

MIMULOPS1S Schweinf.

glandulosa Bak., 18

MIMUSOPS L.

antongilensis Aubrév., 231

antsiranensis F. Friedmann. 229, sqq.

capuronii Aubrév., 229, 231

var. retusa Aubrév.

fa. tomentosa Aubrév., 233

commersonii (G. Don) Engl., 229

coriacea (A. DC.) Miq., 229

elengi L., 231

maxima (Lam.) Vaugh., 229, 231

petiolaris (A. DC.) Dub., 231

MINQUART1A Aubl., 36, 48, 50, 51, 52,

60, 63, 69, 70, 72

guianensis Aubl., 32, 35, 86

MIQUETIA Meissn., 38, 62

MŒRENHOUT1A BL, 366

glandiflora (Schltr.) Schltr., 368

MOMORDICA L.

charantia L., 242

jeffreyana Keraudr., 242

MONANTHOTAXIS Baill.

cauliflora (Chipps) Verdc-, 239

diclina (Sprague) Verdc., 239

Source : MNHN, Paris

— 471 —

MONSONIA L., 436

MONSTERA Adans., 336

acuminata C. Koch., 330

deliciosa Liebm., 326

obliqua Miq., 330

siltepecana Matuda, 330

MORINDA L.

lucida Benth., 250

morindoides (Bak.) Milne-Redh., 250

MOTANDRA A. DC.

guineensis (Thonn.) A. DC., 239

lujæi De Wild., 239

MUCUNA Adans.

flagellipes Vogel ex Hook. f„ 250

MUSSÆNDA L.

mannanii Wernh., 250

MYRICA L.

phillyreæfolia Bak., 18

NATSIATOPSIS Kurz, 62

NATS1ATUM Buch.-Ham., 38, 62

NEODRIESSENIA C. Hansen

membranifolia (Li) C. Hansen, 321, sqq.

NEODYPSIS Baill., 18

NERVILIA Comm. ex Gaudich.

aragoana Gaudich., 368

NEWTONIA Baill.

glandulifera (Pell.) Gilb. & Bout., 246

griffoniana Bak., 246

NICOTIANA L., 436

NOTHAPODYTES Bl., 62

OBERONIA Lindl-, 000

OCHANOSTACHYS Mast., 60, 63, 72

amentacea Mast., 32, 35, 86

OCHLANDRA Thw., 18

OCTOKNEMA Pierre

aflînis Pierre, 248, 251

CECOPETALUM Greemman & Thomps.,

OLAX L., 32, 34, 40, 42, 44, 48, 50, 52,

60, 63, 65

acuminata Wall., 66, 86

andronensis Bak., 70, 86

aphylla Br., 70, 86

benthamniana Miq., 72, 79, 86

imbricata Roxb., 70, 74, 79, 81, 86

irminensis Bak., 66, 86

gambecola Baill., 66, 86

humbertii Cav. & Ker., 66, 86

lanceolata Cav. & Ker., 66, 86

nana Wall., 70, 86

obtusifolia Wild., 86

phyllanthyi R. Br., 72, 86

psitachorum (Lam.) Vahl, 70, 86

refusa Muell., 72, 86

scandens Roxb., 66, 86

subscorpioidea Oliv., 248

stricta R. Br., 72, 81, 86

wightiana Wall., 86

OLEANDRA Cav.

distenta Kuntze, 18

OMPHALOCARPUM Presl ex Dur.

lîcomteanum Pierre ex Engl., 252

ONCOSTEMUM A. Juss., 18

ONGOKEA Pierre, 34, 52, 62, 65

gore (Hua) Engl., 48, 76, 87

ORMOCARPUM Pal. Beauv.

megaphyllum Harms, 250

OROPETIUM Trin., 377, 380

OSBECK1A L., 407, 411, 416

brazzæ Cogn., 424

buettneriana Cogn. ex Buett., 418

canescens E. Meyer ex Graham, 420

chinensis L.

var. pusilla Hansen, 410

congolensis Cogn. ex Buett., 424

decandra (Smith) DC., 59,412, 426, sqq.

porteresii Jac.-Fél., 428

praviantha Jac.-Fél., 427

rotundifolia Smith, 417

senegambiensis Guill. & Perr., 59

togoensis Leuenberger, 407, 428

zambesiensis Cogn., 411

OSTRYODERRIS Dunn.

impressa Dunn., 250

OTACANTHUS Lindl.

cceruleus Lindl., 297, sqq.

fulminensis Kuhlm. & Brade, 301

OTTOSCHULZIA Urb., 63

OXYANTHUS DC.

setosus Keay, 250

PACHYELASMA Harms

tessmannii (Harms) Harms, 240

PACHYPOD1ANTHUM Engl. & Diels

barteri (Benth.) Hutch. & Dalz., 239

PLACHYPLECTRON Schltr., 366

neocaledonicum Schltr., 368

PALISOTA Reichb., 391

PANDA Pierre, 34

PANDANUS L. f., 328

PANICUM L.

brevifolium L., 244

maximum Jacq., 244

Source : MNHN, Paris

— 472 —

PARARISTOLOCHIA Hutch. & Dalz.

ceropegioides (S. Moore) Hutch. &

Dalz., 240

macrocarpa (Duch.) Poney, 240

PARQUETINA Bail).

nigrescens (Afzel.) Bullock, 250

PASPALUM L.

paniculatum L., 244

scrobiculatum L.

var. commersonii Stapf, 244

PAVETTA L.

puberula Hiern, 250

PENNANTIA J. R. & G. Forst., 63

PENNISETUM Rich., 436

PEPONIUM Engl.

vogelii (Hook. f.) Engl., 242

PETERSIANTHUS Merr.

macrocarpus (Pal. Beauv.) Liben, 245

PHAJUS Lour.

daenikeri Krânzl., 368

neocaledonicus Rendle, 368

robertsii F. Muell., 368

tancarvilleæ (Banks ex l’Hérit.) Bl., 368

PHANERODISCUS Cavaco, 32, 34, 36,

40, 44, 54, 62, 65, 68, 70

diospyroidea Cap., 48, 54, 59, 80, 87

perrieri Cavaco

var. orientalis Cavaco & Keraudr.,

48, 54, 87

PHILIPPIA Klotzsch., 18

PHILODENDRON Schott

crassinervium Lindl., 334, 337

guttiferum Kunth, 326, sqq., 336

linnæi Kunth, 329, 331, sqq.

sect. Pteromischum Schott., 328, 332

PHLEBOCALYMNA Griff. ex Miers, 32

PHŒN1COSPERMA Miq., 91

PHOLIDOTA Lindl.

pallida Lindl., 368

PHREATIA Lindl., 361

PHYLLANTHUS L.

amarus Schum. & Thonn., 393, sqq.,

401

ampandadravæ Léandri, 402

andranovatensis Brunei & Roux, 393,

398,4«0, 401

dekindtii Hutch., 244

fraternus Webst., 393, 399, 400

muellerianus (Kuntze) Exell, 244

var. amarus (Schum. & Thonn.)

Léandri, 394

var. baronianus Léandri, 396

subsect. Niruri Webst., 396

reticulatus Poir., 244

subsect. Swartziani Webst., 393

tenellus Roxb., 402

PHYSOCERAS Schltr.

betsomangense Bosser, 258, 259, 260

boryanum (A. Rich.) Bosser, 257

PHYTOCRENE Wall., 38, 62

PICREUS Juss.

smithianus (Ridl.) C.B. Cl., 242

PILEA Lindl.

rivularis Wedd., 18

P1NELLIA Tenore

ternata (Thunb.) Breitenb., 325

PITTOSPOROPS1S Craib, 63

PITTOSPORUM Banks ex Soland.

mannii Hook. f., 250

PLACODISCUS Radlk.

angustifolius Radlk., 287, sqq., 293

attenuatus J. B. Hall, 290, sqq.

bancoensis Aubrév. & Pellegr., 290, 294

bracteosus J. B. Hall, 287, sqq.

boya Aubrév. & Pellegr., 287, 291, sqq.

boya auct., 290

caudatus Pierre ex Radlk., 293, 294

cuneatus Radlk., 287, 288

cuneatus auct., 289

gimbiensis Hauman, 294

glandulosus Radlk., 288, 291, sqq.

leptostachys Radlk., 287, sqq.

leploslachys auct., 289, 291

oblongifolius J. B. Hall, 287, sqq.

opacus Radlk., 289, 293, 294

paniculatus Hauman, 293

pseudostipularis Radlk., 287, 293

pynaertii De Wild., 294

resendeanus Exell & Mend-, 289, 294

riparius Keay, 287, 291, 294

riparius auct., 290

splendidus Keay, 293, 294

turbinatus Radlk., 288, 293

PLATEA Bl., 35, 63

PLEIOCARPA Benth.

bicarpellata Stapf, 239

PLESMONIUM Schott

coudercii Bogner, 305, sqq.

margaritiferum (Roxb.) Schott, 305, 307,

308

PLEURISANTHES Baill., 62

PODOCARPUS L’Hérit. ex Pers.

madagascariensis Bak., 18, 19

PŒCILOCALYX Bremek.

schumannii Bremek., 250

setiflorus (Good) Bremek., 250

POLYCEPHALIUM Engl., 34, 62

POLYGONUM L., 162

POLYPORANDRA Becc.. 62

POLYSPATHA Benth.

paniculata Benth., 242

POLYSTACHYA Hook.

affinis Lindl., 248

fusiformis Lindl., 18

modesta Reichb. f., 248

Source : MNHN, Paris

— 473 —

Isaratananæ H. Perr., 18

PORAQUEIBA Aubl., 63

POTAMOPHILA R. Br.

lelestui Koechlin, 244

PRISTIGLOTT1S Cretz. & Smith, 366

montana Schltr., 368

PROSOPIS L.

insularum (Guill.) Breteler

subsp. novo-guineensis (Warb.) Brete¬

ler, 165

PSEUDANTHEMUM Lindau

ludovicianum (Buettn.) Lindau, 239

PSEUDECH1NOLÆNA Stapf

polystachya (H.B.K.) Stapf, 244

PSEUDOBOTRYS Moeser, 63

PSEUDODRACONTUM N. E. Br., 307,

308

PSI ADI A Jacq., 18

PSEUDOWINTERA Dandy, 13

PSILANTHUS Hook. f.

mannii Hook. f., 250

PSYCHOTRIA L.

latistipulata Benth., 250

PTELEOPSIS Engl.

hylodendron Mildbr., 242

PTERIS L.

perrieriana Chr., 18

similis Kühn, 253

PTEROSTYLIS R. Br., 367

bureaviana Schltr., 368

ophioglossa R. Br., 368

PTEROTABERNA Stapf

inconspicua Stapf, 239

PTYCHOPETALUM Benth., 32, sqq., 60,

62, 65

acuta Miers, 70

diospyroidea Cap., 79

olacoides Benth., 66, 70, 75, 81, 87

petiolarum Oliv., 54, 66, 70

var. paniculatum Engl., 87

var. petiolatum, 87

uncinatum Anse!., 66, 79, 87

PYRENACANTHA Hook. ex Wight, 34,

36, 62

klaineana Pierre ex Exell & Mend., 245

RAPHIDIOCYSTIS Hook. f.

mannii Hook. f., 242

REMUSATIA Schott, 325

RHAPHIODOPHORA Hassk., 336

RHAPHIOSTYLIS Planch. ex Benth., 62

ferruginea Engl.

var. ferruginea, 245

preussii Engl., 246

RHAPTOPETALUM Oliv.

belingense Letouzey, 252

RHEKTOPHYLLUM N. E. Br.

camerunense Ntépé, 451, sqq.

congense De Wild. & Th. Dur., 451

mirabile N. E. Br., 330, 335, 336, 451,

452, 455, 457

RHOPALOPILIA Pierre

pallens Pierre, 248

RHYNCHOSPORA Vahl

corymbosa (L.) Britt., 242

RIC1NODENDRON Muell.-Arg.

heudelotii (Baill.) Pierre & Pax, 244

ROUSSEAUXIA DC., 411

RUELLIA L., 303

SABICEA Aubl.

venosa Benth., 250

SALACIA L.

chlorantha Oliv.

var. dalzielii (H. & M.) N. Halle, 245

hispida Black., 245

nitida (Benth.) N.E. Br., 245

SARCOCHILUS R. Br., 366

rarus Schltr., 368

SARCOSTIGMA Wight & Am., 34, 36,

38, 62

SCADOXUS Rafin., 197

cinnabarinus (Decne.) Nordal, 239

SCHIZACHYRIUM Nees, 436

SCHLEINITZIA Warb.

fosbergii Nevling & Niezgoda, 165

insularum (Guill.) Buckart, 165

megaladenia (Merr.) Guinet & Nielsen,

166

novoguineensis (Warb.) Verdc., 165

SCHŒNEFELDIA Kunth, 107, 137

gracilis Kunth, 107, 109, 113, 124, 125,

134, 135, 136, 138

SCHŒPFIA Schreb., 34, 36, 63, 78

brasiliensis A. DC., 66, 87

chinensis Gardn. & Champ., 57, 66, 83,

sect. Codonium (Vahl) Endl., 40, 42,

44, 50, 65, 81, 87

fragrans Wall., 66, 81, 85, 87

haitiensis Urb. & Britt., 66, 87

jasminodora Sieb. & Zucc., 81, 85, 87

obliquifolia Turcz., 81, 83, 85, 87

obovata Wright, 87

ovata Wight, 85

parvifolia Planch., 66, 79, 87

pringlei Robx., 66, 87

sect. Schœpfia, 40, 44, 50, 81, 87

sect. Schœpfiopsis (Miers) Engl., 42, 50,

SCHŒPFIOPSIS Miers, 40, 65

SCLER1A Bergius

grata Nelmes, 242

Source : MNHN, Paris

— 474 —

verrucosa Wild., 242

SCORODOCARPUS Becc., 32, 36, 40,

44, 50, 60, 63, 65, 70

borneensis Becc., 38, 53, 57, 79, 80, 87

SCUTELLARIA L., 162

SCYTOPETALUM Pierre ex Engl.

klaineanum Pierre, 252

SELAGINELLA Pal. Beauv.

cathedrifolia Sprague, 253

SENECIO L.

melastomæfolius Bak., 18

SHERBOURNIA G. Don

curvipes (Wernh.) N. Halle, 250

SLOANEA L., 91

koghiensis Tirel, 95, 97, 99

lepida Tirel, 103, 104, 105

magnifolia Tirel, 92, 93

montana (Labill.) Smith, 98, 100, 106

ramiflora Tirel, 100, 101, 102

raynaliana Tirel, 98, 100, 101, 102

suaveolens Tirel, 104, 105

SMILAX L.

kraussiana Meisn., 252

SOLANUM L.

terminale Forssk.

subsp. welwitschii (Wright) Heine,

252

SORGHUM Moench., 65

vulgare Pers., 436

SPHÆROTHYLAX Bish. ex Krauss, 199

sphærocarpa (Engl.) Tayl., 207

SPHENOCLEA Gaertn.

zeylanica Gaertn., 147, sqq.

SPIRANTHES Rich., 367

sinensis (Pers.) Ames, 368

STACHYANTHUS Engl., 38, 62

STACHYOTHYRSUS Harms

stadutii Harms, 240

STANDFIELDIELLA Brenan

imperforata (C.B. Cl.) Brenan, 242

STANHOPEA Reichb. f.

tigrina Batem.

var. superba Hort., 361

STEMONURUS Bl., 34, 63

STENOTAPHRUM Trin.

micranthum (Desv.) Hubb. ex Hubb.

& Vaugh., 380

STEPHANIA Lour.

dinklagei (Engl.) Diels, 246, 251

STREPTOCARPUS Lindl.

tsaratanensis Humbert ex Burtt, 18

STREPTOGYNE Pal. Beauv.

gerontogea Hook. f., 244

STRIGA Lour.

asiatica (Willd.) Benth., 431, 432, 434,

437

aspera (L.) Kuntze, 435, sqq.

densiflora Benth., 433, 436, 437

euphrasioides Benth., 433 , 434, 436

forbesii Benth., 433, 436

gesnerioides (Willd.) Watke, 431, 433,

434, 436

hermonthica (Del.) Benth., 431, 434,

sqq.

parviflora Benth., 435, 436

passargei Benth., 435, sqq.

STROMBOSIA Bl., 32, sqq., 42, sqq.,

51, 52, 60, 63, 69, 70, 72

grandifolia Hook. f., 38, 53, 87

javanica Bl., 38, 87

philippinensis (Baill.) Rolfe, 38, 54, 87

pustulata Oliv., 38, 54, 87

scheffleri Engl., 38, 54, 57, 59, 79, 80, 87

STROMBOSIOPSIS Engl., 63, 65, 70

tetrandra Engl., 38, 53, 87

STROPHANTHUS DC.

bullenianus Mast., 239, 249

STRYCHNOS L.

campicola Gilg ex Leeuwenberg, 245

date De Wild., 245

johnsonii Hutch. & Moss., 245

STYLOSANTHES Sw.

erecta Pal. Beauv., 250

SYCOMORUS Gasp.

gnaphalocarpa Miq., 272

SYMPHONIA L. f.

microphylla Benth. & Hook., 18

nectarifera J. & B., 18

SYNCLISIA Benth.

scabrida Miers ex Oliv., 246

SYNGON1UM Schott., 336

SYNTRIANDRUM Engl,

preussii Engl., 246

TACOANTHUS Baill.

pearcei Baill-, 300, 301

TÆNIOPHYLLUM Bl., 366, 367

fasciola (G. Forst.) Reichb. f., 368

trachycarpus Schltr., 368

TAKHTAJANIA Baranova & Leroy, 9,

sqq.

perrieri (Capuron) Baranova & Leroy,

11, 16, 17

TAKHTAJANIACEÆ Leroy, 20

TAKHTAJANIOIDEÆ Leroy, 20

TARENNA Gaertn.

eketensis Wernh., 250

fusco-flava (K. Schum.) N. Hallé, 250

TECTARIA Cav.

angelicifolia (Schum.) Copeland, 253

TELOSMA Coville

africanum (N.E. Br.) Coville, 240

Source : MNHN, Paris

— 475

TEPHROSIA Pers., 436

TERMINALIA L.

superba Engl. & Diels, 242

TESSMANNIA Harms

africana Harms, 240

TETRACERA L.

alnifolia Willd., 337

TETRAPLACUS Radlk.

platychilus Radlk., 300

lauberlii Mez, 298

TETRAPOGON Desf., 107

cenchriformis (A. Rich.) W. D. dayton,

108, 110, sqq., 117

spathaceus (Hochst. ex Steud.) Hack.

ex Dur. & Schinz, 108, 109, 113, 135,

139

tenellus (Roxb.) Chiov., 138

villosus Desf., 108, sqq., 117, 135, 139

TETRASTYLIDIUM Engl-, 50. 63, 65, 70

engleri Schwacke, 38, 53, 87

TETRORCHIDIUM Poepp. & Endl.

didymostemon (Baill.) Pax & HofFm.,

244

THELYMITRA J. R. & G. Forst., 367

longifolia J. R. & G. Forst., 368

THOMSONIA Wall., 307

TOXOCARPUS Wight & Am.

brevipes (Benth.) N.E. Br., 240

TRACHOMA, 366

subluteum (Rupp.) Garay, 368

TRAGIA L.

benthamii Bak., 244

TRICALYSIA A. Rich.

macrophylla K. Schum., 250

oligoneura K. Schum., 250

TRICHOMANES L.

cuspidatum Willd., 19

digitatum Sw., 18

lenormandii V. de B., 19

mannii Hk., 19

montanum Hook., 18

sinuatum Bon., 18

TRIGONELLA L.

cœrulea (L.) Ser., 300

TRISTEMMA Juss.

demeusei De Wild., 245

mauritianum Gmel., 246

oreophilum Gilg, 246

TROCHETIA DC., 439

boutoniana Friedmann, 446

uniflora DC., 445, 448

TROPID1A Lindl., 366

viridifusca KrànzI., 368

ULEIORCHIS Hoenne

ulei (Cogn.) Handro, 141, 142

VANILLA Mill.

africana Lindl., 248

VERNONIA Schreb.

manongarivensis Humb., 18

VIGNA Savi, 436

V1NTICENA Steud.

carpinifolia (Juss.) Burret, 339

VITEX L„ 18

agelæifolia Mildbr., 252

fosteri Wight, 252

VOACANGA Thou.

africana Stapf, 239

WARNECKEA Gilg

reygaertii (De Wild.) Jac.-Fél., 246

WEINMANNIA L.

bojeriana Baill., 18

hildebrandtii Baill., 18

humblotii Tul., 18

WELWITSCHIA Hook. f„ 28

WHITMOREA Sleumer, 44, 63

WORCESTERIANTHUS Merr., 32, 34

casearioides Merr., 76

WULLSCHLÆGELIA Reichb. f.

ulei Cogn., 141

XIMENIA L., 32, 36, 40, 42, 51, 60, 62,

65, 69, 72

americana L-, 48, 76, 87

caffra Sond., 48, 76, 87

elliptica Forst., 48, 87

parviflora Benth., 48, 76, 87

perrieri Cavaco & Keraudr., 61, 75, 76.

79, 81, 87

XIPHOPTERIS Kaulf.

oosora (Bak.) Alst., 18

ZACATEZA Bullock

pedicellata (K. Schum.) Bullock, 250

ZEA L., 436

ZEHNERIA Endl.

capillacea (Schum.) C. Jeffrey, 242

ZENKERELLA Taub.

citrina (Harms) Taub., 240

ZEUX1NE Lindl., 366

francii Schltr., 368

7-ORN1A Gmel.

latifolia Sm., 250

Source : MNHN, Paris

ACHEVÉ D’IMPRIMER LE 25 MAI 1981

SUR LES PRESSES DE F D EN SON

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Dépôt légal : 2 e trimestre 1981 - 92.036

Source : MMHN, Paris

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Ne rien souligner d’autre (noms de personnes, titre, sous-titre, etc.).

Citation de spécimens. — Il est demandé aux auteurs d'éviter les longues listes de spécimens

étudiés et de se borner à citer quelques récoltes représentatives du taxon et de sa répartition.

Les indications variées provenant des étiquettes de récolte ne seront plus citées in extenso

mais devront être synthétisées sous forme de brèves notes phénologiques, écologiques, etc.

Il est conseillé aux auteurs :

1. de réserver les citations exhaustives des spécimens aux Flores en cours de publication quand

cela est possible,

2. ou, à défaut, de déposer ces listes exhaustives dans les bibliothèques des instituts bota¬

niques où elles pourront être consultées ou copiées à l’usage des spécialistes concernés;

3. de remplacer les listes de spécimens par des cartes de répartition, beaucoup plus démons¬

tratives.

Illustrations. — Le format maximum des illustrations publiées est 115 x 165 mm. Les dimen¬

sions des originaux (tant dessins au trait que photographies) devront être 1,5 à 2 fois celles des

illustrations imprimées. Les échelles éventuelles du dessin origiiuil seront indiquées en marge de

celui-ci, en plus des échelles après réduction mentionnées dans la légende destinée à l’impression.

Les photographies seront tirées sur papier blanc brillant, et devront offrir une netteté et un

contraste convenables. La revue ne publie normalement pas d’illustrations en couleurs.

Les figures constituant les éléments d'une même planche doivent être numérotées en chiffres

arabes.

Correspondance. — Voir en page 2 de couverture l'adresse postale. Les manuscrits non conformes

aux prescriptions ci-dessus seront retournés pour modification. Les épreuves sont envoyées une fois:

étant donné les délais postaux paifois considérables il est demandé aux auteurs de procéder aux

corrections sans retard, ceoi dans leur propre intérêt.

Source : MNHN, Paris