CRYPTOGAMIE

ο

SOMMAIRE

B. DESPOULAIN, F. SEIGLE MURANDI, R. STEIMAN et L.

DEGIORGIS - La flore fongique des dréches blanches de mais ..... TH)

C. MOREAU - Les mycotoxines à effets trémorgéniques 89

M.K. ADHIKARI - History of mycological explorations in Nepal ..... 111

1. MOUCHACCA - Fungos do Brazil découverts dans l'Herbier

Mycologique de Nouvelle-Calédonie 129

J.L. MANJON, M.N. BLANCO y G. MORENO - Estudios

micológicos en el Parque Natural de Montfragúe (Extremedura,

España). Il. Aphyllophorales . … 145

Analyses bibliographiques … 153

CONTENTS

B. DESPOULAIN, F. SEIGLE MURANDI, R. STEIMAN et L.

DEGIORGIS - Fungal flora of corn white draff (In French) ........... 79

C. MOREAU - Tremorgenic mycotoxins (In French) ... 89

M.K. ADHIKARI - History of mycological explorations in Nepal ..... 1

J. MOUCHACCA - Fungos do Brazil exsiccata discovered in the

Mycological Herbarium of New-Caledonia (In French) .... 129

J.L. MANJÓN, M.N. BLANCO y G. MORENO - Mycological

studies from Montfragúe Natural Park (Extremadura, Spain). IL.

Aphyllophorales (In Spanish) 3 345

Bibliography 153

Source : MNHN. Paris

CRYPTOGAMIIE

MYCOLOGIE

TOME 11 Fascicule 2 1990

Ancienne Revue de Mycologie. Dirigée par Roger HEIM

DIRECTEUR SCIENTIFIQUE : Madame J. NICOT

AIRE DE REDACTION : Mme M.-C. BOISSELIER. EDITEUR : A.D.A.C.

Publié avec le concours du Muséum National d'Histoire Naturelle

CRYPTOGAMIE, MYCOLOGIE est indexé par : Biological Abstracts, Current Contents,

Publications bibliographiques du CDST (Pascal)

© Copyright 1990. Cryptogamie Mycologie.

Bibliothèque Centrale Muséum

AU

9 3001 00226885 2.

MNHN, Paris

Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1990, 11 (2): 79-88 79

LA FLORE FONGIQUE .

DES DRÈCHES BLANCHES DE MAÏS

Béatrice DESPOULAIN, Françoise SEIGLE MURANDI*, Régine STEIMAN et

Liliane DEGIORGIS

Laboratoire de Botanique, Cryptogamie, Biologie

Cellulaire et Génétique, UFR de Pharmacie, Univ.

Joseph Fourier, BP 138, 38423 Meylan, France.

RÉSUMÉ - 22 contaminants fongiques sont isolés à partir des drèches blanches de

mais en majeure partie cellulosiques. La variation des milieux d'isolement, de la

granulométrie et de l'aération du substrat permet de diviser ces contaminants en

deux groupes principaux. Les contaminants internes présents dans le mais dés la

récolte et les contaminants externes ou superficiels isolés une à deux fois seulement.

Cladosporium herbarum et Monascus ruber sont les principaux contaminants internes.

Moins fréquents, Epicoccum purpurascens, Aspergillus terreus et Penicillium glabrum

ne se développent qu'en présence d'oxygéne. Le second groupe comprend essen-

tiellement des moisissures des genres Penicillium et Aspergillus.

ABSTRACT - Twenty two fungal strains have been isolated from mainly cellulosic

corn white draff. The use of various isolation media, of various granulometries of the

substrate, of various aeration conditions allow to classify the contaminants into two

main groups : internal contaminants present in the corn since harvest and external

contaminants isolated only once or twice. Cladosporium herbarum and Monascus ru-

ber are the main internal contaminants. Epicoccum purpurascens, Aspergillus terreus

and Penicillium glabrum are less frequent and develop only in the presence of oxy-

gen. The second group contents mainly molds of genus Penicillium and Aspergillus.

MOTS CLÉS

Mais, drèches blanches, contaminants fongiques.

INTRODUCTION

La composition chimique du maïs, céréale oléagineuse, pauvre en

cellulose est stable, quelle que soit la variété, le lieu de production ou

l'année. C'est une des raisons qui justifie sa présence dans les rations indus-

trielles. En 1981-1982, 21 millions de tonnes de maïs ont été commercialisées

*

Auteur correspondant

Source : MNHN Paris

80 B. DESPOULAIN et al.

dans la CEE: 15,2 ont été utilisées pour l'alimentation animale et 6,2 mil-

lions ont été transformées par les industries de l'amidonnerie, de la

semoulerie et de la distillerie (Association Générale des Producteurs de

Mais, 1983). Tandis que les deux premiéres sont importantes en Europe, la

troisiéme est surtout développée au Royaume Uni (whisky écossais).

L'amidonnerie fait partie des industries qui, à partir d'une matiére ri-

che en cet hydrate de carbone, l'amidon, le séparent et le purifient. Les

matiéres premiéres utilisées sont surtout des céréales comme le mais. Le lait

d'amidon extrait doit étre trés pur, dépourvu de protéines et d'huile car il

représente le produit de base de toute la chaine industrielle. L'extraction de

ces différents constituants est aujourd'hui compléte, un minimum d'amidon

est “perdu” dans les drèches consommées en alimentation animale. Les pro-

ducteurs d'aliments pour animaux additionnent souvent celles-ci de "Corn

steep" riche en sucre, sels minéraux et protéines. L'ensemble forme le "Corn

gluten feed” produit de substitution des céréales. La demande croissante en

protéines à la fin du XXéme siécle ne peut étre satisfaite seulement par

Vintensification des cultures ou de l'élevage. Des sources de protéines non

conventionnelles doivent étre explorées pour couvrir une partie de ces be-

soins. Les "Single Cell Protein" forment une source d'importance

considérable. Elles représentent les cellules d'algues, de bactéries ou de

champignons cultivées pour leur contenu protéique (Bisaria & Madan, 1983).

L'analyse des drèches de maïs a été réalisée dans le cadre de travaux visant à

enrichir ce substrat en protéines d’origine fongique en vue d’une utilisation

du produit final dans l'alimentation animale. L'incorporation du produit

obtenu dans les aliments pour animaux nécessite l'absence de mycotoxines et

par conséquent l'absence de souches susceptibles d'étre productrices de ces

toxines.

Au cours de ce travail, nous avons étudié les ^dréches blanches" de

mais composées de la fraction cellulosique du “grain” isolée à l'occasion de

la séparation de l'amidon. Nous nous sommes intéressés à la méthode d'ob-

tention de ces dréches ainsi qu'à leur composition avant de les soumettre à

une analyse microbiologique.

MATÉRIEL ET MÉTHODES

Méthodes d'obtention

Le sous-produit industriel étudié a été fourni par les établissements

Roquette, une des deux amidonneries du Nord de la France localisée à

Lille. Ils traitent industriellement 2500 tonnes de maïs par jour venant du

Sud Ouest de la France.

Source : MNHN, Paris

FLORE FONGIQUE DES DRÈCHES BLANCHES DE MAÏS 81

Tableau I - Analyse des dréches blanches.

Table I - Analysis of corn white draff.

Constituants Etablissements | Despoulain et al.

Roquette

Perte à la dessication % 3,80 9,50

Résidu à la calcination % 0,25 2,52

Azote total % 10,36

Azote protéique % 8,70 8,14

Amidon % 20,20

Hemicellulose % 52,30

Cellulose % 16,00

Lignine % 0,80

Lipides totaux % 2,50

pH dréches stérilis 4,05

pH dréches non stérilisées 4,30 4,19

Les grains sont trempés dans une solution d'anhydride sulfureux pen-

dant 30 à 48h à une température de 50 à 52°C. Cette solution permet de

transformer les sucres réducteurs en acide lactique. Les eaux de trempage

chargées de toutes les particules solubles (sucres, sels minéraux, protéines et

acide lactique) sont séparées puis concentrées par évaporation sous vide pour

former le “corn steep’ ou soluble de mais. Le grain, ramolli par le trempage,

subit un broyage grossier qui le fait éclater en libérant le germe sans le bri-

ser. Les germes séparés des autres constituants du grain sont lavés, séchés,

puis pressés pour en extraire l'huile brute. Le tourteau résiduel est destiné à

l'alimentation animale.

La suspension comprenant l'amidon, les protéines et les fibres

cellulosiques est trés finement broyée. Ce mélange subit ensuite deux tami-

sages: le premier sépare les enveloppes les plus grosses, le second les fines

particules. Les enveloppes lavées et séchées sont appelées “dréches”. L/ami-

don et les protéines sont séparés par centrifugation.

Composition

L'analyse des dréches blanches obtenues en amidonnerie est présentée

dans le tableau I. Elles sont riches en hémicellulose (52,3%) et cellulose

(16%). Elles ne contiennent que 8,14% de protéines. Leur teneur en amidon

est encore de 20,2%.

Analyse microbiologique

1 à 2g de drèches en poudre ou 2 à 3g en granulés sont mis en présence

de 4 milieux de cultures différents, soit déposés à la surface du milieu, soit

Source : MNHN. Paris

82 B. DESPOULAIN et al.

introduits dans la boîte de Pétri avant de couler le milieu selon la méthode

de "Warcup" (Warcup, 1960).

Les milieux de culture utilisés sont: a) milieu gélosé à base d'extrait de

malt (MEA): il contient I5g d'agar et 15g d’extrait de malt pour | litre de

milieu, pH —5. b) le méme milieu additionné de chloramphénicol (500mg/1)

(MEAc), pH -5. c) milieu de Galzy & Slonimski (1957) (GS), gélosé avec

15g d'agar par litre, pH —4,5. d) milieu pomme de terre, glucose, agar

(Difco) (PDA), pH — 5,6.

Ces milieux de culture sont stérilisés à l'autoclave à 120*C pendant 20

mn et répartis en boîtes de Pétri (9mm). Aprés ensemencement des dréches,

les cultures sont incubées à 24°C en vue d'obtenir un bon développement

des contaminants. Chaque contaminant isolé et identifié est conservé en tube

sur milieu à base d'extrait de malt à 4°C. Chaque essai est réalisé en 3 exem-

plaires.

RÉSULT

[S ET DISCUSSION

Les contaminants isolés des drèches blanches sont regroupés dans le ta-

bleau Il, représentant respectivement les isolements réalisés à partir des 4

milieux utilisés: MEA, MEAc, GS, PDA à la surface de la gélose et en

“Warcup”.

Le tableau nous indique pour les 4 milieux: - le nom de chaque conta-

minant, - sa présence ou non sur les dréches en poudre, - sa présence ou

non sur les drèches en granulés, - sa fréquence d'apparition par rapport au

nombre de boîtes ensemencées (3).

Pour faciliter l'expression des résultats, nous pouvons diviser les conta-

minants en 3 grands groupes (Tabl. III) selon le nombre d'observations

faites de chaque contaminant sur un milieu donné: - micromycètes peu

fréquents: observés une fois, - micromycètes assez fréquents: observés deux

fois, - micromycètes très fréquents: observés trois fois et plus. Ces obser-

vations sont réalisées sans tenir compte de la granulométrie du solvant.

Nous constatons que la majeure partie des micromycétes n'est observée

qu'une fois sur un méme milieu à l'exception de 6 moisissures observées 2

fois et 6 moisissures observées 3 fois et plus.

Les pH des 4 milieux utilisés sont trés proches. Ils vont de 4,5 pour le

milieu GS à 5,6 pour le milieu PDA. Ces pH faiblement acides conviennent

à la grande majorité des micromycétes. Les milieux MEA, MEAc et PDA à

base de malt ou d'amidon sont riches par rapport au milieu GS contenant

seulement des éléments minéraux et une seule source de carbone.

Source : MNHN, Paris

FLORE FONGIQUE DES DRÈCHES BLANCHES DE MAÏ

83

T drüches en Poudre T drüches en granulés

‘Aspergillus anstelodami WEGE О А EU QU PA ER TO

Ποία Thon & Church. MES κα Τη. Е

aaia cayat πα ο ο μμ νο UT

itkanain) Thom E Church Εν ΟΕ МОЕ

‘Aspergillus echinulatus

\Geleer.J Thon & Church

ur

¡Aspergillus flavus var colummaris ! — |

RER 1

Aspergillus repens

(бе ary) Fach

‘Aspergillus terreus var auren

"lon Thon Е Rape

Cladosporium herbarum

Were TE

'Epicoceum purpurascens

аа E

IMonascus ruber jS el

!van Tieghon

Penicillium aurantiogriseum Uu

ene Een

Tableau II: Récapitulatif des contaminants fongiques isolés des dréches blanches de

Mais. 1: micromycéte peu fréquent, 2: micromycéte fréquent, 3: micromycéte

trés fréquent.

Table II: Récapitulation of the various fungal strains contaminaiting corn white

draff.

Source : MNHN, Paris

84 B. DESPOULAIN et al.

| Micronycètes Micronycétes Micronycétes

peu fréquents assez fréquents très fréquents

milieu MEA Cladosporium herbarum Epicoccum purpurascens Penicillium qlabrum 5

Surface Paecilonyces |

Penicillium aurantioqriseum

Penicillium claviforme

Penicillium crustosun

Penicillium pinophylun

ARCUP. Aspergillus echinulatus Aspergillus chevalieri Monascus ruber

milieu MEAc Aspergillus amstelodami Aspergillus chevalieri

Surface Aspergillus terreus Penicillium aurantio-

v. aui griseum

Aspergillus terreus

Cladosporium herbarum

Monascus ruber

Penicillium claviforne

Penicillium corylophilium

WARCUP. Aspergillus chevalieri Aspergillus flavus var Monascus ruber

Aspergillus repens columnaris

Basidionycète

Cladosporium herbarum

milieu GS Aspergillus terreus Cladosporium herbarum

Surface Penicillium glabrum Epicoccum purpurascens

Monascus rube

Penicillium breviconpactum

ΠΠ Aspergillus chevalieri Monascus ruber

Aspergillus manginii

Basidionycete

milieu PDA Aspergillus flavus var Epicoccum purpurascens ‘Aspergillus terreus var

Surface columnaris

Aspergillus niger

Cladosporium herbarum

Penicillium glabrum

ARCUP Aspergillus chevalieri

Aspergillus manginii

Cladosporium herbarum

Penicillium corylophilum

Tableau III: Fréquence des contaminants sur les différents milieux de culture.

Table III: Occurrence of contaminants on each culture medium.

Source : MNHN. Paris

FLORE FONGIQUE DES DRÈCHES BLANCHES DE MAÏS 85

Spécificité de la souche pour le milieu

Cinq souches sont isolées régulièrement sur 3 ou 4 des milieux utilisés:

Aspergillus chevalieri, Cladosporium herbarum, Epicoccum purpurascens,

Monascus ruber et Penicillium glabrum. Dans l'ensemble, les autres souches

n'ont été isolées qu'à partir d'un seul milieu de culture.

Influence de la granulométrie du substrat sur la pousse des contaminants

Les souches qui apparaissent dans les drèches en granulés ont du mal à

se développer car leurs conidies sont enfermées à l'intérieur des granulés. El-

les manquent d'oxygène pour leur germination. Elles présentent des

difficultés de croissance car elles ne sont pas directement en contact avec le

milieu nutritif. Le manque de place et la faible humidité relative vont engen-

drer une faible proportion de germination des conidies. Ces dernières de-

vront donc être nombreuses pour que le contaminant se développe. Les sou-

ches qui se développent dans les drèches en granulés seront appelées des

contaminants “internes” ce qui signifie qu'elles sont présentes dans le sub-

strat depuis le stockage des grains de maïs ou même au champ avant la

récolte. Les autres contaminants isolés une à deux fois au maximum, et à

partir de drèches en poudre sont appelés contaminants “externes” ou superfi-

ciels des drèches. Ils peuvent avoir contaminé le substrat “accidentellement”

au cours du transport.

Parmi les moisissures isolées sur plusieurs milieux de culture, aucune

ne s'est développée sur les drèches en poudre sans se développer sur les

drèches en granulés et inversement.

Influence de Vaérobiose et de l'anaérobiose sur le développement des

contaminants

À la surface des milieux, les souches se développent en aérobiose. Sous

la gélose, la germination des conidies et le début de la phase de croissance

s'effectue en anaérobiose. Seules 3 souches se développent exclusivement en

aérobiose: Aspergillus terreus, A. terreus var. aureus, Epicoccum purpurascens.

Les Penicillium isolés n'apparaissent qu'en surface des milieux de cultu-

re à l'exception de Penicillium corylophilum qui est présent en “Warcup” sur

le milieu PDA.

Aspergillus chevalieri, Cladosporium herbarum et Monascus ruber se

développent trés bien sur les milieux utilisés; ils sont indifférents à l'absence

d'oxygène lors de la germination des conidies et à la granulométrie du sub-

strat. La pousse de ces contaminants dans toutes les conditions essayées met

en évidence leur présence en profondeur du substrat. Epicoccum purpurascens,

Aspergillus terreus et Penicillium glabrum sont également des contaminants

internes aux dréches, mais ne se développent qu'en aérobiose.

Source : MNHN, Paris

86 B. DESPOULAIN et al.

Cahagnier & Poisson (1973), en étudiant la microflore des grains de

maïs humide en fonction de divers modes de stockage ont observé la

dominance du genre Cladosporium sur les grains de maïs à la récolte et une

pauvreté en Penicillium et en Aspergillus. Plus xérophiles que le genre

précédent, ces moisissures sont susceptibles d'être à l'origine d'une "flore de

stockage”.

Sur 9 Axpergillus isolés, 5 appartiennent au groupe glaucus. La nature

osmophile des espèces de ce groupe nécessite l’utilisation d’un substrat

caractérisé par une forte pression osmotique (Raper et al., 1973). Aspergillus

chevalieri est présent dans les 4 milieux étudiés en Warcup dont 3 en

présence de dréches en granulés et Aspergillus echinulatus, A. manginii et A.

repens sont isolés uniquement en condition Warcup. A. chevalieri est un trés

bon utilisateur de glucose, et il a été trouvé dans les grains de mais moisis

(Richard et al., 1969); mais il n'attaque pas les substrats cellulosiques (Reese

& Downing, 1951).

Parmi les contaminants internes, Monascus ruber van Tiegh et

Cladosporium herbarum sont les plus fréquents sur les différents milieux

utilisés. Le premier, encore appelé Monascus purpureus Went, appartient aux

Pezizales. La délimitation de cette espéce est mal connue. Cette moisissure

est couramment rencontrée dans les aliments à base d'amidon. Différents

rapports sur ces 2 noms ont été effectués (Domsch et al., 1980) à propos de

souches venant d'une part d'amidonnerie en Afrique du Sud et d'autre part

de mais d'ensilage contaminé par des micromycétes aux USA, en Australie

(Cole & Kendrick, 1968) et en France (Moreau, 1971). Cladosporium

herbarum (Hyphomycétes) est un des premiers colonisateurs des substrats

végétaux inertes, en particulier les graines et les feuilles. Son pH de croissan-

ce optimum est voisin de celui des milieux utilises. De nombreux rapports

existent sur sa présence dans les graines de céréales (Malone & Muskett,

1964; Moubasher et al., 1972). Il possede une bonne activité amylolytique

(Flanagan & Scarborough, 1974) et la décomposition de la cellulose se pro-

duit sur les substrats les plus variés. Ces différents renseignements peuvent

expliquer son abondance dans les dréches de mais. Epicoccum purpurascens et

Aspergillus terreus se trouvent tous deux couramment dans les graines et no-

tamment le maïs (Moubasher et al., 1972). Le premier dégrade la cellulose

(Moreau et al, 1965); le deuxième la cellulose (Pugh, 1966) et l'amidon

(Franz, 1975). La production de gaz carbonique par A. terreus, et donc son

développement, sont diminués par un substrat dense comme des billes de

verre (Parr & Norman, 1964); cela explique son absence de développement

en ensemencement “Warcup” où les drèches recouvertes de gélose forment

un substrat très compact.

D'après l'étude de Richard et al. réalisée en 1969 sur les champignons

toxiques associés au mais stocké, la majorité des souches toxiques isolées ap-

partiennent aux genres Aspergillus et Penicillium. Ceux-ci, comme nous

l'avons confirmé au cours de cette analyse, n'envahissent pas ou peu les

Source : MNHN, Paris

FLORE FONGIQUE DES DRÈCHES BLANCHES DE MAÏS 87

grains avant la récolte mais plutôt au cours du stockage. Les contaminants

internes comme Monascus ruber, Epicoccum purpurascens, Cladosporium

herbarum et Aspergillus chevalieri ne sont pas cités comme des producteurs

majeurs de mycotoxines.

En conclusion, l'analyse des dréches de mais sous forme de poudre et

de granulés a permis de discerner les contaminants ‘internes’ des contami-

nants "externes". Le milieu malt chloramphénicol, milieu le plus riche inhi-

bant les bactéries, permet d'isoler 14 des 22 micromycétes détectés dans les

dréches. Les autres milieux confirment et complètent cette analyse

microbiologique.

Le nombre restreint de contaminations liées à un substrat peu hydraté

(9,5%) et la faible proportion de souches susceptibles de produire des

mycotoxines dans les drèches non stérilisées engagent à entreprendre une va-

lorisation de celles-ci par enrichissement protéique en vue de l’utilisation ali-

mentaire animale.

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Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1990, 11 (2): 89-110 89

LES MYCOTOXINES A EFFETS TRÉMORGÉNIQUES

C. MOREAU

Laboratoire de Microbiologie Appliquée,

Fac. des Sciences et Techniques; 29287 Brest Cedex.

RÉSUMÉ - Cette révision bibliographique est relative aux récents travaux concer-

nant les mycotoxines (métabolites secondaires de moisissures des denrées alimentai-

res) capables d'induire des effets trémorgéniques. Elles peuvent être classées еп: а)

aflatréme, paxilline, pénitrèmes, janthitrèmes, lolitrémes et paspalitrémes; b)

verruculogéne et fumitrémorgines; c) tryptoquivaline et dérivés; d) territrémes. Pour

chaque mycotoxine sont envisagés: les champignons producteurs, les conditions de

production, la structure chimique, la biosynthèse et le métabolisme ainsi que les

symptômes d’intoxications observés en conditions naturelles où expérimentales. La

iétanie d'herbage, le “rye-grass staggers’ et quelques autres cas de mycotoxicoses

trémorgéniques sont briévement exposés.

ABSTRACT - This review reports on recent works concerning mycotoxins (second-

ary metabolites of food-borne moulds) able to induce tremorgenic effects. They may

be classified as : a) aflatrem, paxilline, penitrems, janthitrems, lolitrems and paspali-

irems, b) verruculogen and fumitremorgins, c) tryptoquivaline and derivatives, d)

territrems. The review of each of the mycotoxins studied includes the fungi responsi-

ble, factors in production, the chemical structure, biosynthesis and metabolism, and

the symptoms of poisoning observed in natural or experimental conditions. Grass-

land tetany, ryegrass staggers and some other cases of tremorgenic mycotoxicoses are

briefly described,

MOTS CLÉS : mycotoxine, neurotoxicose, Aspergillus, Penicillium, métabolites, ali-

mentation animale et humaine, revue.

Les mycotoxines sont des métabolites dits “secondaires” (Bu'lock, 1975,

1980; Mantle, 1987) élaborés par des moisissures développées sur des ali-

ments. Si ces métabolites sont en quantité suffisante, l'ingestion des aliments

provoque des intoxications chez les consommateurs, hommes ou animaux

(Moreau, 1968).

Des processus biologiques fort divers peuvent être altérés ou induits par

les mycotoxines. Certaines agissent sur le foie, le tractus digestif, les reins;

Source : MNHN, Paris

90 C. MOREAU

d'autres ont des effets oestrogenes. Les mycotoxines neurotoxiques sont cel-

les dont l'action se situe au niveau du systéme nerveux; parmi elles:

- quelques-unes altérent les fonctions motrices, causant des ataxies ou

des paralysies (acide kojique, maltoryzine, patuline, citréoviridine);

- d'autres ont des effets essentiellement convulsifs (acide aspergillique et

autres composés à noyau pyrazine, acide cyclopiazonique et dérivés);

- certaines ont des actions émétiques (trichothécénes) ou sialorrhéennes

(octohydroindolizine);

- des alcaloides dérivés de l'ergoclavine ont des effets psychotropes

(alcaloides de 1 Aspergillus fumigatus et du Penicillium rogueforti) (Moreau,

1989);

- un petit nombre d'entre elles, plus récemment découvertes, sont

trémorgéniques.

Une substance est dite trémorgénique lorsque, par action sur le système

nerveux central, elle provoque des tremblements prolongés. Les substances

naturelles capables de telles actions sont assez rares. Par exemple, les

alcaloides et les amino-alcools de synthèse causent seulement de courtes

périodes de tremblements (quelques minutes à quelques heures).

Comme le remarquent Smith & Moss (1985), la structure chimique des

mycotoxines trémorgéniques est particulièrement complexe. Elle est essen-

tiellement fondée sur le noyau tryptophane lié à un certain nombre d'unités

isopreniques dérivées du mévalonate. En fonction de leur formule chimique,

il est possible de grouper ces mycotoxines en quatre catégories (Ciegler et

al., 1976; Cole & Dorner, 1986; Cysewski, 1977; Steyn & Jemmali, 1977):

1) plusieurs ont un squelette commun biologiquement actif (Fig. la): il

s'agit d’une structure dérivée du géranylgéraniol et du tryptophane, avec des

différences d'un trémorgene à l'autre dues aux dérivés isopréniques qui y

sont adjoints; entrent dans cette catégorie: l'aflatréme, la paxilline, les

pénitrémes, les janthitrémes ainsi que les lolitrémes et les paspalitrémes;

2) le verruculogene et les fumitrémorgines constituent un second grou-

pe dont la molécule dérivée du tryptophane et de la proline renferme 3 ato-

mes d'azote;

yptoquivaline et ses dérivés correspondent à des tétrapeptides cy-

cliques;

4) les territrèmes forment un ensemble particulier car, ne dérivant pas

du tryptophane, ils ne possèdent pas d'azote dans leurs formules.

Les effets des mycotoxines trémorgéniques dans les élevages d'animaux

ont fait l'objet, en 1981, d'une mise au point de Mantle & Penny. Leur

mode d'action précis est encore mal connu bien que quelques

Source : MNHN. Paris

MYCOTOXINES TREMORGENIQUES 91

expérimentations (Norris et al., 1979) et les travaux de Peterson et al. (1982)

aient complété les études pharmacologiques antérieures (Hotujac & Stern,

1974; Hotujac et al., 1976; Sobotka et al., 1978) pour permettre de définir les

effets sur les neurotransmetteurs d'acides aminés.

AFLATREME

L’ Aspergillus flavus est surtout connu pour les mycotoxines

hépatotoxiques qu'il élabore: les aflatoxines. Il est cependant apte à

synthétiser d'autres mycotoxines et notamment des toxines trémorgéniques.

Des 1964, Wilson & Wilson l'avaient constaté avec diverses souches isolées

de céréales: 5mg de mycélium ou de sclérotes, issus d'une culture de 2 se-

maines, dissous dans 0,1 ml de propylène glycol puis dispersés dans une so-

lution de gélatine 4 1% ont été administrés po. à une souris; 30mn plus

tard, on a constaté l'apparition de tremblements de la tête puis du corps

tout entier, l'animal se déplaçant par des mouvements de reptation. Après

ingestion d'une quantité plus importante de substance toxique, les trem-

blements sont interrompus et remplacés par une phase de convulsions

tétaniques qui aboutit souvent à la mort. Les médications habituellement

utilisées dans la maladie de Parkinson (sulfate d'atropine, bromure de

méthantéline, bromure d’hexaméthonium, carbamate de méphenésine) sont

ici inefficaces (Wilson, 1971a).

La substance trémorgénique de I’ A. flavus a été isolée (Gallagher &

Wilson, 1978); le nom d’aflatréme lui a été donné et sa structure chimique a

été définie (CyH39NO:) (Gallagher et al., 1980d; Richard & Gallagher,

1979), puis confirmée par cristallographie 4 rayons X (Callagher et al.,

1980b) (Fig. 1b). A partir de sclérotes d' A. flavus, on a, en outre,

récemment isolé et identifié plusieurs métabolites de la méme famille que

laflatréme: la paspalinine (Cole et al., 1981b), l'aflavinne СН ХО

(Gallagher et al., 1980b) et la dihydroxyaflavinine (Cole et α].. 19810:

Wicklow & Cole, 1982), dérivée de la précédente.

PAXILLINE

A partir d’extraits chloroformiques de Penicillium paxilli, Cole et al

(1974) ont purifié une substance, la paxilline, C2/H33NO4. La structure chi-

mique de ce métabolite a été déterminée (Springer et al. 1975) (Fig. Ic).

Administrée á des coquelets d'un jour ou á des souris, la paxilline pro-

voque des tremblements persistant au moins 24 h (Cole et al., 1974). Ce qui

différencie la paxilline de la plupart des autres mycotoxines trémorgéniques,

C'est sa faible toxicité: p.o. la DLso pour la souris est de 150mg/kg (Springer

et al., 1975).

Source : MNHN. Paris

92 C. MOREAU

HAC

Fig. 1 - Squelette commun aux mycotoxines trémorgéniques du premier groupe (a) et

formules chimiques de l'aflatréme (b), de la paxilline (c), du pénitreme A (d) et

du janthitréme E (e).

Fig. | - Common skeleton to tremorgenic mycotoxins of the first group (a) and

chemical formulae of aflatrem (b), paxilline (c), penitrem A (d) and janthitrem

Е (е),

Source : MNHN. Paris

MYCOTOXINES TREMORGENIQUES 93

Le P. paxilli est très répandu dans le sol; on l'a également isolé de

fruits secs, notamment de noix de Pecan. Les souches d'Amérique du Nord

fournissent de la paxilline tandis que les souches d'Australie élaborent sur-

tout une autre mycotoxine trémorgénique, le verruculogéne (Cokrum et al.,

1979).

Des champignons appartenant au genre Emericella (téléomorphe des

Aspergillus du gr. nidulans) produisent aussi de la paxilline et des dérivés

indoloditerpéniques: les émindoles DA et SA (Nozawa et al., 1987).

PENITREMES

Wilson et al. (1985) ont donné le nom de pénitrémes a des substances

responsables, au Tennessee, de l'intoxication de moutons ayant consommé

un mais fortement moisi par un Penicillium identifié comme Р. cyclopium:

inappétence, sialorrhée, asthénie, tremblements, convulsions et mort, tel était

le tableau des symptômes observés. De nombreux cas d'intoxications dues à

des pénitrèmes ont été, par la suite, observés chez divers animaux: chevaux

(Wilson et al., 1968), chiens (Arp & Richard, 1979; Richard & Arp, 1979;

Richard et al., 1981), bovins (Dorner et al., 1984), en relation avec des ali-

ments contaminés par le P. crustosum.

Ciegler (1969a,b) a rapporté la présence de deux substances tré-

morgéniques, les trémortines A et B, dans une mycotoxicose de vaches

laitières liée á du grain moisi par un Penicillium déterminé, á tort semble-t-il

(Pitt, 1979a), comme P. palitans.

Pénitrémes et trémortines sont identiques. Le pénitréme A a pour for-

mule globale Cj;H4,NO,CI (Fig. 1d), le pénitreme B (découvert par Hou et

al., 1970, 1971a, b): Cx;H44NOs et le pénitréme C: Ca;H44NOsCI. Ces formu-

les ont été confirmées par Malaiyandi et al. (1976) qui ont en outre

constaté que l'on extrayait plus facilement les toxines à partir du mycélium

que des filtrats de culture.

Plus récemment Mantle et al. (1981) ont isolé du P. crustosum - et

séparé par HPLC des autres mycotoxines voisines - un pénitréme D (qui est

le désoxypénitréme A) et un pénitréme E (qui est le déchloropénitrème A),

tous les deux trémorgéniques pour la souris mais ayant une activité trois fois

moins élevée que celle du pénitréme A. Il existe également un pénitrème F

dont la configuration vient d'étre déterminée (Jesus et al., 1983 b, c).

Contrairement à l'opinion admise il y a quelques années, selon laquelle

plusieurs espéces de Penicillium de la sous-section asymmetrica-fasciculata

(surtout P. crustosum, P. cyclopium, P. granulatum et P. palitans) produi-

saient des pénitrèmes trémorgéniques (Ciegler, 1969a, b; Ciegler & Pitt,

1970), Pitt (1979a, b) estime que, dans cette sous-section, seul le P. crustosum

synthétise ces mycotoxines, ce que confirment Söderström & Frisvad (1984)

Source : MNHN. Paris

94 C. MOREAU

ainsi que El-Banna & Leistner (1988). Il est en outre bien établi que les P.

nigricans, P. canescens et quelques autres espéces isolées du sol sont

également aptes à produire des pénitrèmes (Mantle et al., 1984; Patterson et

al., 1979; Shreeve et al., 1979). Du pénitrème A a été détecté dans des ex-

traits par le chloroforme de cultures de P. lanoso-coeruleum isolé dans le

Sud-Est des Etats-Unis de noix de Pecan endommagées par les attaques d'un

charançon, Curculio caryae (Wells & Payne, 1976; Wells & Cole, 1977):

injectés par intubation a des coquelets d'un jour, ces extraits provoquent des

tremblements et des convulsions précédant la mort (Kirksey & Cole, 1974).

L'influence de la composition du milieu de culture, de la température

d'incubation, de l'irradiation UV et de l'agitation de la culture sur la pro-

duction de pénitrèmes a été particulièrement étudiée (Di Menna et al,

1986), cette production étant évaluée à la fois par un test biologique sur sou-

ris et par analyse chimique. On a pu obtenir une bonne production de

pénitrèmes dans une culture de P. nigricans au bout de 5 jours en fermenteur

de 60 litres: cette production est stimulée par apport de chlorure de calcium

au milieu de culture (Mantle et al., 1984).

La biosynthése du pénitréme A a été étudiée par Mantle et al. (1983)

d'une part, Jesus et al. (1982, 1983a) d'autre part, à l'aide de précurseurs aux

carbone et hydrogène marqués: il dérive du tryptophane qui contribue au

noyau indole, du géranyl-géranyl-pyrophosphate et de deux unités

isopentenyl-pyrophosphate (Fig. Id). Le pénitrème A n'est pas métabolisé

dans le foie; il est directement éliminé par la bile (Mantle, 1986).

De nombreux essais d'intoxication ont été réalisés avec des pénitrèmes

purifiés (Arp & Richard, 1981; Hayes et al., 1976; Hayes & Hood, 1977;

Sobotka et al., 1978; Wilson, 1971b); tous les animaux expérimentés se sont

révélés sensibles.

Le pénitréme A agit surtout sur la moelle épinière (Richard et al,

1981) mais il a aussi des effets neurochimiques sur des synaptosomes de

mouton et de rat; il augmente la libération de médiateurs par les

synaptosomes cérébrocorticaux (Norris et al., 1979, 1980; Wilson et al.,

1972),

Signalons un brevet américain (n° 3 666 630) qui prévoit l'utilisation

possible des pénitrèmes comme rodenticides.

JANTHITRÈMES

La dénomination “janthitrémes” a été donnée à des mycotoxines

trémorgéniques élaborées par le Penicillium janthinellum isolé de prairies de

ray-grass en Nouvelle-Zélande (Gallagher et al., 1980a). On en connaît cinq

(appelés respectivement A, B, C, D, E) dont la structure chimique a été

Source : MNHN. Paris

MYCOTOXINES TREMORGENIQUES 95

déterminée (Fig. le) (Jesus et al., 1984) et pour lesquelles une méthode de

dosage par HPLC à été mise au point (Laurens & Gallagher, 1985).

VERRUCULOGENE

Selon Day & Mantle (1979), le verruculogéne est la plus puissante

mycotoxine trémorgénique connue.

Le verruculogène à d'abord été obtenu à partir d'une souche de

Penicillium verruculosum isolée d'arachides (Cole et al., 1972). On l'a

également reconnu comme métabolite du P. piscarium (Gallagher & Latch,

1977) et du P. paraherquei (Yoshizawa et al., 1976), deux espèces communes

dans le sol, surtout en régions tropicales, que Pitt (1979a) considère comme

synonymes du P. simplicissimum. Il est aussi produit par le P. janthinellum

(Lanigan et aL, 1979), par les P. piceum, P. janczewskii et P. raistrickii

(Mantle & Wertheim, 1982; Patterson et al., 1979), par des isolats australiens

du P. paxilli (Cokrum et al, 1979) ainsi que par Y Aspergillus caespitosus

(Schroeder et al., 1975) et certaines souches d’ А. fumigatus développées dans

du mais ensilé (Dorner et al., 1984; Mantle et al., 1978).

De formule brute C>H33N:307, c'est un tripeptide dérivé

6-méthylindole. Sa structure a été déterminée (Fig. 2a) (Cole & Kirksey,

1973; Fayos et al., 1974). Sa biosynthése comporte du tryptophane, de la

proline, mais aussi des dérivés isoprénoides de l'acide mévalonique et un

groupe méthyle fourni par la méthionine (Day & Mantle, 1982). Dans le

foie, le verruculogène est métabolisé en une substance indolique

trémorgénique, appelée TR-2, qui est éliminée par la bile (Cole et al., 1975).

Une souche de Nouvelle-Zélande, rapportée au P. estinogemum, mais qui se-

rait, semble-t-il, P. simplicissimum (Pitt, 1979a), cultivée en fermenteurs de 50

1, а permis l'obtention de quantités importantes de mycotoxine (Day et al.,

1980); la sporulation, pendant la phase exponentielle de croissance du cham-

pignon, parait essentielle pour la production de toxine. Une méthode de

détection spectrofluorométrique permet de déceler de minimes quantités de

verruculogéne, méme dans des extraits bruts de mycélium (Day & Mantle,

1980).

Une réponse trémorgénique importante est obtenue chez la souris par

injection ip. de 0,92 mg/kg de toxine (Sobotka et al., 1978); la DLsp est,

dans ce cas, de 2,4 mg/kg (Cole et al., 1972).

On ne confondra pas le verruculogène avec la verruculotoxine, une au-

tre mycotoxine produite par le P. verruculosum (Cole et al., 1985; MacMillan

et al., 1976).

Source : MNHN. Paris

96 C. MOREAU

Fig. 2 - Formules chimiques du verruculogéne (a), de la fumitrémorgine A (b) et de

la fumitrémorgine B (c).

Fig.

- Chemical formulae of verruculogen (a), fumitremorgin A (b) and

fumitremorgin B (c).

FUMITRÉMORGINES

Dès 1902, Ceni & Besta avaient établi une relation entre l'absorption

d'aliments moisis par l Aspergillus fumigatus et injection d'extraits de

spores et mycélium à des animaux par voie péritonéale, sous-cutanée ou

veineuse; dans tous les cas, on aboutissait souvent à la mort "apres des spas-

mes, des convulsions tétaniques et épileptiques". Divers autres travaux

(Bodin & Gautier, 1906; Turesson, 1916; Henrici, 1939) rapportent des ob-

servations comparables.

II fallut attendre 1964 (Wilson & Wilson) et surtout 1985 (Kuga et al.;

Yamazaki et al.) pour que soient découvertes et correctement définies diver-

ses substances tripeptidiques trémorgéniques: la fumitrémorgine А,

C32H4107N3 (Eickmann et al., 1975; Yamazaki et al., 1975, 1980a) (Fig. 2b),

la fumitrémorgine B, C33H4sOgN3 (Yamazaki et al., 1980b) (Fig. 2c), la

Source : MNHN, Paris

MYCOTOXINES TREMORGENIQUES 97

fumitrémorgine C et l'époxyfumitrémorgine С (Cole, 1981) la

fumitrémorgine D et d'autres substances voisines, provisoirement désignées

sous les vocables TR-2, SM-5, SM-R et SM-Q (Cole et al., 1975).

Presque toutes ies souches connues d’ A. fumigatus isolées d'ensilages

en Allemagne sont aptes à élaborer des fumitrémorgines, les souches japo-

naises isolées de substrats variés semblent moins toxinogènes (Horie &

Yamazaki, 1981). Outre I’ A. fumigatus, Ý A. fischeri (téléomorphe:

Neosartorya fischeri var. fischeri), le Penicillium janthinellum (Lanigan et al.,

1979) produisent de la fumitrémorgine A. La fumitrémorgine B a été trouvée

non seulement parmi les métabolites de l'A. fumigatus, mais aussi parmi

ceux de l' 4. caespitosus sur mais (Schroeder et al., 1975), du P. piscarium

(Gallagher & Latch, 1977), du P. puberulum (Dix et al., 1972) et du P.

simplicissimum (Gallagher & Latch, 1977).

Les fumitrémorgines sont des dérivés complexes de l'indole; le

tryptophane et la proline interviennent dans la synthése de leur noyau

dioxopipérazine, principal promoteur de la réaction trémorgénique et

convulsive (Gallagher & Latch, 1977). Si l'on ajoute du tryptophane au mi-

lieu de culture de I’ A. fumigatus, la production de fumitrémorgine s/accroit

énormément (Bu'lock, 1980).

Au cours des récentes années, de nombreuses intoxications avec effets

trémorgeniques liés à l' 4. fumigatus ont été signalées chez diverses espèces

animales au Japon (Yamazaki et al., 1971, 1985), chez des bovins aux Etats-

Unis (Cole et aL, 1977a), chez des moutons et des bovins en Angleterre

(Mantle et al., 1978). De telles intoxications ont été maintes fois observées

dans des élevages de diverses régions de France (Moreau, 1973, 1974, 1979,

1982) chez des veaux, des vaches laitiéres, des taurillons, des porcelets, des

pores charcutiers, des dindes, des canards de Barbarie, des lapins, des chiens.

Les troubles constatés sont vraisemblablement liés aux fumitrémorgines mais

aussi peut-être à leur interférence avec d'autres mycotoxines produites par

cette moisissure (Moreau, 1989).

Seules les intoxications expérimentales à l'aide de toxine purifiée per-

mettent de se rendre compte que les fumitrémorgines provoquent essen-

tiellement des tremblements (Yamazaki et al., 1971).

TRYPTOQUIVALINE ET DÉRIVÉS

Deux métabolites hautement trémorgéniques, la tryptoquivaline et la

tryptoquivalone, ont été isolés de riz moisi par l’ A. clavatus notamment en

Thaïlande (Glinsukon et al., 1974). On connaît maintenant plusieurs dérivés

de ces tétrapeptides synthétisés par association du tryptophane avec l'acide

anthranilique, la valine, Valanine ou la méthylalanine (Büchi et al., 1977;

Clardy et al., 1975); il s'agit de deux hydroxylamines, la nortryptoquivaline

et la nortryptoquivalone et de trois amines secondaires, la déso-

Source : MNHN. Paris

98 C. MOREAU

Fig. 3 - Formules chimiques de la tryptoquivaline et de ses dérivés. а.

tryptoquivaline (R=CH3, R’=OH), nortryptoquivaline (R=H, R’=OH),

désoxytryptoquivaline (R=CH3, R’=H) et désoxynortryptoquivaline (R=H,

R'=H). b. nortryptoquivalone (К = OH) et désoxynortryptoquivalone (К = Н).

Fig. 3 - Chemical formulae of tryptoquivaline and derivatives. a. tryptoquivaline

(R=CH3, R'=0H), nortryptoquivaline (R=H, R’=OH), desoxytryptoqui-

valine (R=CH3, R’=H) and desoxynortryptoquivaline (R=H, R’=H). b.

nortryptoquivalone (R = OH) and desoxynortryptoquivalone (R =H).

xytryptoquivaline, la désoxynortryptoquivaline et la désoxynortryptoqui-

valone (Fig. 3).

Ces mycotoxines, affectant l’activité des neurones moteurs du système

nerveux central, provoquent des tremblements vigoureux, des troubles

tétaniques, des agitations, des spasmes, des convulsions d'aspect épileptique.

Des accidents sur bétail ont notamment eu lieu au Transvaal après

consommation de résidus moisis de bière de sorgho (Kellerman et al., 1976).

TERRITRÈMES

A Taiwan, Ling et al. (1979a) ont isolé de cultures d' 4. terreus deux

substances trémorgéniques qu'ils nommèrent d'abord C, et C; puis, respec-

tivement, territrémes A et B (Ling et al., 1979b, 1982). Leurs structures chi-

miques sont très voisines; contrairement aux autres mycotoxines

trémorgéniques, les territrèmes ne dérivent pas du tryptophane et ne

possèdent pas d'azote dans leur formule (Cole & Dorner, 1986) (Fig. 4). La

formule brute du territrème A est C:5H3009; celle du territrème B C:9H3409.

Une autre molécule, nommée territréme B' a été isolée: СюНза Ош

(Peng et al., 1985; Cole & Dorner, 1986); elle différe du territréme B par

l'insertion d'un atome d'oxygène pour constituer un anneau pyrone

supplémentaire.

Source : MNHN, Paris

MYCOTOXINES TREMORGENIQUES 99

OCH,

Fig. 4 - Formule chimique du territreme B

Fig. 4 - Chemical formula of territrem B.

Un territreme C a été mis en évidence plus récemment (Ling et al.,

1984): il diffère du territrème B par la présence d'un groupement

4-hydroxy-3,5-diméthoxyphényle au lieu d'un groupement 3,4,5-tri-

méthoxyphényle

Des travaux sur la biosynthése des territrémes ont été effectués en utili-

sant différents précurseurs radioactifs (Kuo & Yun, 1988; Ling & Peng,

1988).

Les territrémes provoquent des tremblements de longue durée, des

convulsions, une augmentation de la diurése et de la sialorrhée (Ling, 1976;

Ling et al., 1986).

Parmi les mycotoxines réputées trémorgéniques mais dont la molécule

est dépourvue d'azote, il convient de citer la verrucosidine, une neurotoxine

isolée du P. verrucosum var. cyclopium, sur laquelle on ne possède encore que

peu de renseignements (Burka et al., 1983).

DIVERS

Des manifestations nerveuses, du type trémorgénique, ont été souvent

observées chez des animaux, plus rarement chez l'homme, rappelant des

Symptômes de mycotoxicoses, sans que l’on ait pu, jusqu'alors, identifier les

toxines responsables.

Source : MNHN, Paris

100 C. MOREAU

Les récentes publications concernant la microbiologie des sols rappor-

tent la possibilité d'absorption par les racines de métabolites élaborés par

des éléments de la rhizosphère; ces substances migreraient ensuite dans les

parties vertes, aériennes, broutées par les animaux. Ces métabolites peuvent

être zootoxiques et nullement phytotoxiques (Capitaine, 1973; Day &

Mantle, 1980; Moreau & Moreau, 1960).

Une telle hypothèse pourrait s'appliquer à la fameuse "tétanie

d'herbage” (Hopkirk et al., 1933; Moreau, 1968; Tulloch, 1972), au “rye-grass

staggers” (Cunningham & Hartley, 1959; Fletcher & Harvey, 1981; Latch,

1985; Lloyd, 1959), au “migram” ou “marsh staggers” (Chesney, 1953).

Dans le cas du Lolium perenne, on a pu mettre en cause un champi-

gnon endophyte abondant au niveau de la partie basse des tiges et présent

dans les caryopses (Neill, 1940); d’abord rapporté au genre Gliocladium

(Latch, 1983), il a ensuite été nommé Acremonium loliae (Gallagher et al.,

1984). En soi, cet endophyte n'est pas toxique pour les animaux

(Cunningham, 1958; Neill, 1941); mais il a été démontré que sa présence sti-

mulait chez la plante la production de produits toxiques, les lolitrèmes, que

l'on peut donc considérer comme étant du type phytoalexines. Ces

lolitrèmes, mis en évidence par Gallagher et al. (1977, 1981, 1982a, b, 1984)

dans les gaines foliaires et les semences de Lolium, ont une structure chimi-

que très proche de celle des pénitrèmes (Mantle, 1986) et de la paxilline

(Weedon & Mantle, 1987), ce qui permet de comprendre l'analogie des syn-

dromes constatés.

A la méme famille chimique appartiennent aussi les paspalitrémes qui

ont une action trémorgénique incontestable; produits comme les lolitrèmes,

leur présence expliquerait les accidents constatés chez le bétail dans les prai-

ries de Paspalum (Cole et al., 1977b; Gallagher et al., 1980c).

L'hypothése a été émise (Moreau, 1982) qu'une partie des symptómes

(notamment effets trémorgéniques) constatés par des témoins lors de l'in-

toxication collective provoquée en aoüt 1951 par la consommation de pain à

Pont-Saint-Esprit (Gard) pourrait étre liée au développement fortuit

d'Aspergillus fumigatus dans quelques sacs de farine ayant servi à la

préparation du “pain maudit”.

On a de méme attribué à la tryptoquivaline et à la tryptoquivalone la

mort d'enfants en pays Tai après consommation de riz moisi par l 4.

clavatus (Glinsukon et al., 1974), mais la preuve formelle n'a pas pu être

apportée.

La maladie connue dans l'Ouest du Nigéria sous le nom de "Ilesha

shakes” paraît liée à la consommation d'ignames et autres nourritures

moisies (Wright & Morley, 1958). Wilson (1971b) pense que les pénitrèmes

élaborés par plusieurs espèces de Penicillium ne seraient pas étrangers à cette

affection.

Source : MNHN, Paris

MYCOTOXINES TREMORGENIQUES 101

CONCLUSION

Tant par la proximité de leurs structures chimiques que par

l'uniformité des syndromes, les mycotoxines à effets trémorgéniques consti-

tuent un groupe homogene. Il convient à ce sujet de souligner les relations

étroites entre structure et activité. L'intérét qu'elles suscitent est croissant si

l'on en juge par l'abondance de la bibliographie qui les concerne.

On constate que les champignons actuellement connus comme produi-

sant ces mycotoxines appartiennent tous aux genres Aspergillus et Penicillium

(Raper & Fennel, 1965; Pitt, 1979b). Les mémes mycotoxines peuvent étre

métabolisées par des champignons rapportés à des espèces différentes. Inver-

sement, une même espèce fongique est quelquefois apte à élaborer plusieurs

mycotoxines différentes.

Quelques effets trémorgéniques constatés chez les animaux et chez

l'homme ont été, souvent hypothétiquement, rapportés à de telles

mycotoxicoses. Pour certains d'entre eux, il a été prouvé qu'il s'agissait de

substances peu ou non toxiques élaborées par des champignons mais capa-

bles d'induire chez des plantes la formation de composés toxiques, du type

phytoalexines, à structure chimique trés proche de celle des mycotoxines

trémorgéniques. Bien des points demeurent obscurs. On sait encore peu sur

les transformations des aliments dans le tractus digestif ou au niveau du

rumen. Ce ne sont souvent pas les mycotoxines ingérées qui agissent mais

leurs dérivés métabolisés.

Ainsi, tant en amont qu’en aval, au niveau des précurseurs et a celui

des métabolites, il reste un vaste domaine de recherches à poursuivre, plein

d'intérêt théorique et d'applications pratiques.

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HISTORY OF MYCOLOGICAL EXPLORATIONS IN NEPAL

Mahesh Kumar ADHIKARI

Botanical Survey and Herbarium, Department of

Medicinal plants, Thapathali, Kathmandu, Nepal.

ABSTRACT - The present article provides a brief review on history of mycological

explorations carried on by the investigators till now in Nepal. The collection and sys-

tematic study recorded so far dates back to the period of J.D. Hooker (1848-50)

Пот which M.J. Berkeley (1854) described 44 species of higher fungi. Since then tax-

onomic and biogeographic studies on Nepalese mycoflora have been done mainly in

the central region. Eastern and western zones have not been intensively explored so

far except few, Several new and endemic species are described from alpine and su-

balpine zones. The fungi parasitic on cereal crops and plants of economic importance

have been studied much in comparison to medicinal plants. The medicinal, industrial

and mycorrhizal fungi are still poorly known from the country. The literature survey

till now records about 428 genera and 1200 species. The himalayan belts still need

intense mycological survey.

RÉSUMÉ - Cet article retrace un bref résumé de l'histoire de l'exploration

mycologique réalisée au Népal jusqu'à aujourd'hui. Les collectes et les études

systématiques recensées remontent jusqu'à l'époque de J.D. Hooker (1848-30) à par-

tir desquelles M-I. Berkeley (1854) décrivit 44 espèces de champignons supérieurs.

Depuis, les études taxonomiques et biogéographiques sur la mycoflore népalaise ont

Surtout été réalisées dans la région centrale. Les zones orientales et occidentales n'ont

pas été explorées où très peu, De nombreuses espèces endémiques nouvelles ont été

décrites en provenance des zones alpine et subalpine. Les champignons parasites sur

les céréales et les plantes économiquement importantes ont été beaucoup plus étudiés

que ceux des plantes médicinales. Les champignons médicinaux, industriels ou

Mycorhiziens sont encore trés mal connus dans le pays. La compilation

bibliographique a permis de recenser environ 428 genres et 1200 espéces. Lcs étages

himalayens nécessitent encore d'intenses collectes mycologiques.

KEY WORDS : Mycology, Himalaya, botanical history.

INTRODUCTION

Nepal, the land of the Himalaya, with an area of 147181 sq km, lies in

between 26°22 N latitude and 80°40 - 88°12 E longitude. The average length

Source : MNHN, Paris

112 M.K. ADHIKARI

is 800km from the river Mechi (East) to Mahakali (West) and 140km wide

from North to South. The topography is too much rugged in nature due to

varying altitude between 350m (flat land to the south) and 8648m

(Himalayan belt in the north). The climate is warm humid in summer and

cool dry in winter. These complex geomorphology, altitude and climate have

flourished the country with diverse interesting floras from north to south

and east to west. The main climatic belts and forest types are described in

table 1.

Table 1

Climatic Altitude (m) Dominant forest types

belts

Tropical Up to 1000 Shorea robusta

Subtropical] From 1000 to 2000 | Schima - Castanopsis in East

Pinus roxburghii on West

Temperate From 2000 to 3000 Quercus - Rhododendron in East

Cedrus - Abies on West

Subalpine From 3000 to 4000 | Lower belt of Tsuga - Abies

and upper belt of Betula -

Rhododendron

Alpine | From 4000 to 5000 | Lower belt of scrub of

Rhododendron - Juniperus

and upper steeppe belt

Nival Above 5000

The phytogeographic elements in turn have made the country a

treasure house for the luxurient growth of tremendous amount of fungi.

The publications are scattered in different journals in different languages.

Singh & Joshi (1977) for the first time published the list as “Bibliography on

fungi of Nepal”. Since then there has been a great accumulation of

references worth compilation. Therefore, this work was undertaken as a

preliminary attempt to record the history of mycological explorations carried

in Nepal by different mycologists in time to time. For convenience the

synoptic view of the works or studies have been divided into 4 periods

chronologically (Tab. 2).

Source : MNHN, Paris

MYCOLOGICAL EXPLORATIONS IN NEPAL 1

Table 2

S.N. Year Authors

1 Mid of the 19th century Berkeley (1854)

2 Between 1901 and 1916 Sydow & Butler (1912, 1916)

3 1917 - 1950 Cummins (1943)

4 1950 - till now All other ref. since Mundkur

& Thirumalachar (1952)

13

Before reviewing the publications or papers it is better here to provide

a glimpse on the concerned literatures for taxonomic and biogeographic

studies on specific taxa done by different authors. The taxa treated here are

adopted after Hawskworth, Sutton & Ainsworth (1983) “Dictionary of

fungi”. The list of references according to the main taxonomic groups of

Nepalese mycoflora is given as below.

Taxonomic groups

MYXOMYCOTA

Ceratiomyxomycete:

ctyosteliomycetes

siomycetes

Myxomycetes

References

46 - 78 - 110

45-46-47

46

14 - 19 - 46 - 77 - 78 - 84 - 104 - 105 - 110

EUMYCOTA

Mastigomycotina

Chytridiomycetes

Oomycetes

Zygomycotina

Zygomycetes

Ascomycotina

Basidiomycotina

Hymenomycetes

Gasteromycetes

Urediniomycetes

19 - 57 - 60 - 61 - 89 - 102 - 115

13 - 19 - 20 - 22 - 52 - 53-54-58 - 63 - 98 - 102 - 111 - 124

19 - 64 - 87 - 95 - 96

5-12-13-14- 16- 19-25- 44 - 49 - 50 - 54 - 57 - 58 - 63

- 64-65-70 - TI - 72 - 79 - 80 - 81 - 83 - 90 - 91 - 92 - 97 -

102 - 103 - 111 - 113 - 120 - 121 - 123 - 127 - 128 - 129

1-2-4-8- 10- 12- 13- 14(a,b) - 15 - 16 - 19- 48 - 50 - 65

- 83- 85- 86 - 100 - 102 - 109 - 111 - 112 - 113 - 116

1-12-13- 14(b) - 15- 19 - 50 - 59 - 62 - 83 - 112

3-5-6-9-11-12- 13- 19-21-26-27-28 - 34- 35-

36 - 37 - 38 - 39 - 40 - 41 - 43 - 51 - 54 - 55-57-58 - 63 -

64 - 65 - 67 - 73 - 74 - 82 - 102 - 103 - 116 - 125,

Source : MNHN. Paris

114 M.K. ADHIKARI

Ustilaginomycetes |3 - 11 - 12 - 13 - 14(с) - 19 - 57 - 58 - 64 - 65 - 66 - 76 - 95 -

102 - 108

Deuteromycotina

Coelomycetes 56

Hyphomycetes 3-7-9-13- Id() - 19- 29-30-31 -32- 33 - 51 - 54 - 57

58 - 59 - 63 - 64 - 65 - 66 - 68 - 69 - 75 - BB - 93 - 9.

96 - 98 - 99 - 101 - 106 - 107 - 111 - 117 - 122 - 126

ο

This taxonomic grouping of references is provided here, with a view to

avoid the repetition of citation while discussing the papers in specific

taxonomic pattern. So the works or studies are discussed chronologically.

1. Period between 1854 and 1950 (first to third)

The mycological foray in Nepal started since the period of J.D.

Hooker (1848-54), the third botanist, who explored east Nepal in a botanical

study. His specimens were studied and described by M.J. Berkeley in

Hookers’s Journal.

Berkeley (1854), the eminent mycologist, in his “indian fungi” reported

44 species of Nepalese fungi. In those papers he described 20 new species

viz. Lentinus nepalensis, L. inquinans, Lycoperdon elongatum, L. emodense,

Polyporus cerues, P. elatinus, P. flavidus, P. florideus, P. nepalensis, P. pictilis,

Irpex zonatus, Polyporus vivax, Radulum spongiosum, Scleroderma nitidum,

Sphaeria nepalensis, Stereum endocrocinum, Trametes tephroleuca, T. versatilis,

Ustilago ocrearum and Xylaria fistuca from subtropical and subalpine zones

of the country.

Since 1854 to 1911 and 1917 to 1948 there was a long gap in

mycological investigation. Butler & Bisby (1960) and Bilgrami et al. (1979)

depict of three Himalayan rusts and Exobasidium sp. described by Sydow &

Butler (1912, 1916) and Cummins (1943). The route maps followed by

different investigators are also provided here with (Fig. 1).

2. Period since 1952

Mundkur & Thirumalachar (1952) included 4 species of smuts in the

“Ustilaginales of India” from a critical study of deposited herbariums

collected by Hooker and Kurkill from east Nepal. Balfour-Browne (1955),

the eminent mycologist of British Natural History Museum, in “Some

himalayan fungi” enlisted 40 genera and 74 species viz. Ascomycotina (7

genera, 8 species), Hymenomycetes (17 genera, 24 species), Gasteromycetes (5

genera, 7 species), Urediniomycetes (8 genera, 28 species) and

Ustilaginomycetes (3 genera, 7 species). This publication came out due to

Source : MNHN, Paris

MYCOLOGICAL EXPLORATIONS IN NEPAL 115

gathering of specimens by O. Polunin, W.R. Sykes and L.H.J. Williams

(1952) from the eastern part of Jumla (Alt. between 1800m and 5400m) in a

botanical expedition organised by Natural History Museum. The species

studied by E.J.H. Corner were also included in the list. Newly described

species are Aecidium pleurospermae Balfour-Browne on Pleurospermum sp.,

Chrysomyxa taghishae Balfour-Browne on Rhododendron dwarf sp., Gomphus

Moccosus var. floccosus Balfour-Browne, and Pleurotus nepalensis Corner.

Amylaria, Corner's new monotypic genus i. e. A. himalayensis, was also

included in the list.

Balfour-Browne’s “Fungi of recent Nepal expedition” (1968) consists of

88 genera and 156 species viz. Oomycetes (3 genera and 3 species),

Ascomycotina (20 genera, 24 species), Basidiomycotina (Hymenomycetes, 37

species; Gasteromycetes, 4 species; Urediniomycetes, 30 species; Ustila-

ginomycetes, 10 species) and Deuteromycotina (4 genera, 4 species). These

specimens were collected during the botanical expeditions made by (1)

J.D.A. Stainton (1956), (2) A.H. Norkett (1961-1962), (3) O. Polunin (1949),

(4) Stainton, Sykes and Williams (1954) and (5) Stainton (1952). The

expeditions (1) and (2) were from east while the rest from central sector. In

this paper Clavulina alata Corner, Chromocyphella bryophyticola Balfour-

Browne, Lentaria macrospora Corner, Mollisia dhankutae Balfour-Browne,

Parrotia melamchinensis Balfour-Browne and Podosporium himalensis Balfour-

Browne were added new to science. He proposed two new names Panus

polychrous (Lev.) Singer: Balfour-Browne (= Lentinus polychrous) and

Mastigonetron americanum (Mont.) Balfour-Browne (= Pestalotia americana).

Mishra (1963, 1965) incidently came across the natural occurrence of

pycnial and aecial stages of Puccinia sorghi (the maize rust) on Oxalis

corniculata at Sikha (Pokhara-Muktinath, central Nepal). In 1965 in a survey

of central Nepal (Butwal-Muktinath) he found the occurrence of the pycnial

and aecial stages of 3 different graminicolous rusts on various species of

Berberis.

Kobayashi (1965) reported the occurrence of Calostoma sp. in east

Nepal. Imazeki et al. (1966) reported 3 genera and 3 species (1

Ascomycotina, 2 Basidiomycotina) collected in botanical expedition

organised by National Science Museum, Tokyo, Japan.

Bhatt (1965, 1966) in his preliminary list enumerated 118 species of

fungi (Myxomycota 1, Mastigomycotina and Zygomycotina 8, Ascomycotina

27, Basidiomycotina 33, Deuteromycotina 51). Bhatt & Manandhar (1971,

1972, 1975) reported few species of aquatic moulds and rust fungi from

Kathmandu valley.

Singh (1966) reported 18 wild species of mushrooms sold at

Kathmandu market in a bamboo package. In 1968 (a, b) he listed 43 genera

and 89 species (14 Mastigomycotina, 13 Ascomycotina, 32 Basidiomycotina

and 30 Deuteromycotina) of parasitic fungi affecting 108 wild and cultivated

Source : MNHN. Paris

M.K. ADHIKARI

116

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Source : MNHN, Paris

117

MYCOLOGICAL EXPLORATIONS IN NEPAL

Алорипов E

Source : MNHN, Paris

118 M.K. ADHIKARI

plants and 10 aquatic moulds from Kathmandu valley. Singh & Nisha

(1973 a, b, c) collected 7 species of Cercospora (on 7 hosts) and 1 species of

smuts (on 2 hosts) from Dhulikhel and Kathmandu valley. In 1974 they

reported one species of Exobasidium from Dhulikhel. In 1976 (a, b, c) they

enlisted 79 genera and 122 species (14 Myxomycota, | Oomycete, 5

Ascomycotina, 80 Basidiomycotina and 22 Deuteromycotina) of fungi. Singh

& Adhikari (1977) described 4 genera and 5 species of fleshy fungi collected

from Manichur, Kathmandu valley. Singh et al. (1977) isolated 3 species of

Blastocladia using tomato fruit balt. Singh & Upadhyaya (1978) described 5

interesting fungi from Suryavinayak (Kathmandu valley), Jomson and

Tukuche (central Nepal).

Khada & Shah (1967) in “Preliminary list of plant diseases” listed 154

species of parasitic fungi on 79 hosts (cultivated) including | species of

Algae from different parts of the country (east and central). In 1968 they

along with Lawat listed 210 fungi parasitic on 97 hosts, in the supplementry

list, from east and central zones.

Deighton (1967-1976) studied and described 6 species of imperfect fungi

sent to CMI for identification.

Goto & Sugiyama (1968), on studies of himalayan yeasts and moulds,

reported 4 species which encluted Debaryomyces nepalensis described as new

to science.

Kreisel (1969) listed 9 genera and 15 species of Gasteromycetes

collected by J. Poelt from Khumbu Himal and adjoining areas between the

altitude of 2450m and 5400m. In it he described Bovistella poeltii, Lycoperdon

niveum and L. yetisodale new to science. Poelt (1969) in an expedition to

Khumbu Himal and its adjoining area collected 55 species of Myxomycetes

which was published in “Khumbu Himal”. The 2 species, viz. Arcyria

nepalensi and Lamproderma nigrisplendidum, were newly introduced to science

in his report.

Sutton (1970) reported 2 Hyphomycetes among which Pseudobeltrania

chumrungensis was newly described.

Sharma (1971) isolated 2 aquatic moulds from Kathmandu valley.

Pandey (1971) in a paper of ecological ramblings in tarai forests of Nepal

included 3 rusts. Pandey (1976) published a list of 314 specimens of

Basidiomycotina collected from hilly forests of different regions

(Kathmandu valley, Daman, Hetauda, Rampur, Janakpur (central Nepal);

Dingla and Khand bari (east Nepal)). In this paper most of the specimens

were identified upto generic level without any descriptions. But yet this re-

port provides a major conception of distribution and growing regions for

mushrooms hunters.

Onsberg ( 1973) recorded 2 species of Myxomycetes in which Lycogola

fuscoviolaceum was added new to science. In 1974, Horie & Udagawa

Source : MNHN, Paris

MYCOLOGICAL EXPLORATIONS IN NEPAL 119

described 5 taxa isolated from himalayan soil among which 4 species, viz.

Anixiella micropertusa, А. хайоі, A. sphaerospora and Gelasinospora

himalayensis, were introduced as new to science.

The most significant contribution to the mycoflora of Nepal is that of

G. Durrieu (1975-1987), the French mycologist, who explored the central

region (except few eastern parts) from tropical to alpine belts of this

himalayan country. He intensively collected, studied and described the rust

fungi only. In 1975 (a), he described 2 new species Hamaspora dobremezii

and H. nepalensis parasitic on Rubus fockeanus and R. biflorus respectively. In

another paper of the same year he gave an account on the biogeography of

phytopathogenic fungi in relation to phytogeographic zonation. In that pa-

per he remarkably tabulated the concentration of large number of fungi in

subtropical and temperate belts in comparison to tropical and subalpine zo-

nes. In 1977 (a) he added Coleosporium himalayense parasitic on Pinus

wallichiana as new to science. In “Les rouilles des Rubus au Népal" (1977 b)

he described 9 species of rusts along with their keys for identification

including biogeography. Among them 2 species new to science Hamaspora

viennotii on Rubus acuminatus and Phragmidium quinqueloculare var.

triseptatum on Rubus biflorus and R. foliolosus were also added. In 1979,

Melampsora ribis on Ribes takara, Puccinia аппаритае оп Polygonum

polystachyum, Puccinia commelinae on Commelina benghalensis, Puccinia

mallae on Clematis barbellata, Puccinia manangensis on Clematis orientalis,

Puccinia pilearum on Pilea umbrosa and Puccinia heraclei-nepalensis on

Heracleum nepalense were described by him as new to science. In “Uredinales

du Nepal” (1980) he enumerated 150 species out of which Hapalophragmium

nepalense on Derris cuneifolia, Phragmidium cinnamomeum on Rosa sericea

and R. macrophylla, Ravenelia microcephala on Acacia concinna and Ravenelia

pennatae on Acacia pennata were newly described. A new name Puccinia

emodensis (= P. nitida) was also proposed in it. In the same article he also

noted the distribution of these elements with Indian subcontinent, Yunan,

China, Sinojapanese, south east Asiatic and European countries. In 1987 he

reported 30 species with 4 new taxa (Puccinia mercei on Satyrium nepalese,

Uromyces dobremezii on Euphorbia stracheyi, Uromyces langtangensis on

Anaphalis nepalensis and Uromyces obesus on Heteroropogon contortus)

collected from Langtang valley and Lamjung himal by him and J. Merce.

Gjaerum et al. (1975) reported the occurrence of powdery scab fungus

from east Nepal. jaerum & Steineger (1978) collected and studied 10

species of rusts from Rolwaling (central Nepal) at varying altitude of 1500m

to 3850m.

Manandhar & Shah (1975) in the second supplementary list of plant

disease enumerated about 200 fungi parasitic on 143 species of wild and

cultivated hosts without their critical information (date and locality) and

with the repetition of few species reported earlier. Algae was also included

in the list. Manandhar (1977a) alone added 7 genera and 27 species of rusts

Source : MNHN. Paris

120 M.K. ADHIKARI

from llam, Birgunj, Kathmandu, Pokhara and Nepalgunj. She (19770)

again added 50 species of Cercospora from different parts of Nepal.

Minoura et al. (1975 a,b, 1977) isolated 20 genera and 29 species of

Ascomycotina from the soil samples collected from different regions of

Nepal and only one species (Coniochaeta nepalica) was introduced to science

Adhikari (1976) listed about 30 wild edible species of mushrooms

collected daily as food during in season by local herds at Manichur

(Kathmandu valley). In 1984 he reported a parasitized agaric. He also threw

light on different ethnic groups associated with mushrooms collection and

consumption in different phytogeographie regions of Nepal (1987). His pa-

per “Polypores of Nepal” (1988) consists of check list along with his own ad-

ditions to list. Adhikari & Manandhar (1983-1988) reported 19 species (12

rusts, 2 smuts, | Ascomycete, 3 Fungi Imperfecti) of fungi parasitic on 15

hosts belonging to the family Rosaceae, Polygonaceae and Gramineae. In

1986, they described a new Passalora species as new to Science. Adhikari &

Yami (1984) recorded 3 fungi (2 rusts, | Imperfect fungi) on the medicinal

plants Cymbopogon from Kathmandu valley.

Joshi (1976 a, b) reported 6 species of Oomycetes from Kathmandu

valley. In 1977 he again added 9 genera and 21 species of fungi (1 Oomycete,

4 Basidiomycotina, | Ascomycotina, 15 Deuteromycotina). Lama (1976,

1977) collected and reported the occurrence of 66 species of fungi (6

Oomycetes, 12 Ascomycotina, 8 Basidiomycotina, 40 Deuteromycotina)

affecting wild and cultivated plants around the Pokhara valley (central

Nepal).

Ranjitkar & Bhatt (1976) described one Craterellus species collected

from Sundarijal (Kathmandu valley). Shrestha K. (1976-1984) isolated 73

species of imperfect fungi from different local seeds. Morinaga et al. (1977)

isolated 15 species of Hyphomycetes from soil samples collected at different

parts of Nepal. Nisha et al. (1977) reported 5 species of Myxomycetes from

Kathmandu valley.

Ryvarden (1977) registered 50 species of wood inhabiting

Aphyllophoraceous fungi from the collections of J. Poelt. This collection

from Khumbu region was concentrated between the altitude 1800m and

3900m. In this report Phellinus poeltii, a newly described species, was

introduced. In concluding remark he noted 2 tropical and subtropical and 9

temperate species with their affinities with Japan, Fennoscandia, Siberia and

America.

Waraitch & Thind (1977 a, b, c) reported 29 genera and 37 species of

Ascomycotina from central Nepal and proposed two new combinations.

Manandhar & Bhatt (1979) isolated 7 taxa of pathogenic fungi from the

seeds of Eleusine coracana.

Source : MNHN. Paris

MYCOLOGICAL EXPLORATIONS IN NEPAL 121

Bandhary (1980) collected 13 species of fungi (1 Ascomycotina, 12

Basidiomycotina) from Pokhara valley. In 1984 he prepared a check list of

mushrooms (edible and poisonous) along with their local names. He also

studied the market samples and found 25 species being sold as adible ones

(1985).

Vaidya & Manandhar (1981) isolated 17 taxa of fungi from a varying

depth of cultivated land soil of Kirtipur (Kathmandu valley).

In 1982 the result of “Microbiological expedition to Nepal” on

Nepalese mycoflora investigation organised by National Science Museum,

Tokyo was published as “Reports on the Cryptogamic study in Nepal’. The

study was done in joint venture with Nepalese mycologist in the year

1979-1980. In this report Hagiwara & Bandhary listed 17 genera and 35

species of Myxomycota collected from central region (Langtang valley).

Hagiwara alone enumerated 12 species of Dictyostelid cellular slime moulds

from Gosainkunda area with reference to their altitudinal distribution

influenced by various phytogeographical factors, Hagiwara (1983) described

4 new species of these slime moulds (D. exignum, D. gracile, D. longosporum

and D. magnum) collected from the same area, as new to science. Otani

(1982a) described 27 species of cup fungi including two new species, viz.

Spathularia bifurcata and Leotia himalensis. Otani & Bhandary (1982)

described Taphrina nepalensis, new to science, parasitic on Preris quadriaurita.

Konno (1982) isolated 11 species of Chytrids from the soil samples collected

by Y. Kobayashi, M. Watanabe and H. Hagiwara. In 1986 she again

enumerated 8 species of Chytrids isolated from the same soil samples.

Udagawa & Horie (1982) described Apiosordaria vestita and Coniochaeta

emodensis as new to science (Ascomycotina) isolated from soil samples.

Udagawa & Sugiyama (1982) published 64 species of Ascomycotina isolated

from soil, dung, herbal drugs and spices collected at various places in Nepal.

In it they described several new species, viz. Achaetomium nepalense, A.

purpurascens; Cercophora himalayensis, — Coniochaeta — perangusta, — [sia

anixielloides, Sporormia nepalensis, Thielavia emodensis and T. expansa.

Takada & Udagawa (1983) described 2 new species of Eupenicillium

isolated from soil samples collected from central and west Nepal, viz. Æ.

angustiporcatum and E. nepalense.

Sharma (1983 a,b) while studying the type specimens at PAN

Herbarium reported 2 species collected from central Nepal among which

Dasyscyphus thindii was introduced as new to science. Sharma & Sharma

(1983) recorded only one species from Nepal. Thind & Sharma (1983)

enumerated 38 species from the critical study of Nepalese Himalayan

Helotials collected by Norkett (1961, central zone), J.D.A. Stainton (1962,

central zone) and H. Singh (1968, cenrtal zone) Katumoto (1984)

introduced a new monotypic genus Cladosporothyium and the species C.

Source : MNHN, Paris

122 M.K. ADHIKARI

nepalense found on the leaves of Myrsine semiserrata collected from

Phulchowki (Katmandu valley).

In 1984 Ryvarden's collection (1979) from Pokhara and Annapurna

region (central Nepal) was jointly studied with Hjortstam. This collection

was concentrated between 1200m and 3800m altitude. They published the

occurrence of 60 genera and 95 species in their “Some new and noteworthy

Basidiomycetes (Aphyllophorales) from Nepal”. In this article the new

species described were Grammothele bambusicola, Innotus Hemisetulus,

Peniophora bicornis, Phlebia albo-fibrillosa and Phellinus acontextus. They

also proposed new combinations Daedalea incana (Lev.) Ryv. (= Trametes

incana) and Innonotus flavidus (Berk.) Ryv. (= Polyporus flavidus).

Cotter & Bhandary (1985) reported the occurrence of the species

Cavimalum indicum parasitic Arundinaria in Nepal. Shrestha (1985) recorded

another species of Cordyceps i.e. C. nutans from Lato Manang (central

Nepal). Cotter & Adhikari (1986) reported the occurrence of the stem rust

fungi (Cronartium himalayense) on Pinus roxburghii collected from Syabru

bensi area (central Nepal) during his investigation on mycorrhizal fungi.

CONCLUSION

The intense mycological investigation carried out yet is concentrated in

the central region in comparison to east. West zone of Nepal is less

explored. Much of the endemic and new species are collected and described

from the temperate, subalpine and alpine belts. Thus till now 428 genera

and 1200 species have been reported from Nepal (Tab. 3).

Table 3

Taxa Genera Species

Myxomycota 18 85

Eumycota

Mastigomycotina

& Zygomycotina 33 69

Ascomycotina 130 260

Basidiomycotina 144 466

Deuteromycotina 103 320

Total 428 1200

Though the table provides meagre knowledge on the occurrence of

different types of fungi, yet it is seen that the most of the reports are only

related with larger fungi in comparison to other taxa. The mycoflora of

Nepal shows close affinities mainly with Sinojapanese and Indian

Source : MNHN. Paris

MYCOLOGICAL EXPLORATIONS IN NEPAL 123

subcontinent, element and also with European and North American. There

is still more need that the country should be explored intensively from north

to south and east to west on various aspects.

ACKNOWLEDGEMENT

The author expresses his sincere gratitude to Dr. S.B. Malla, Director General

and Dr. S.B. Rajbhandary, Deputy Director General, Department of Medicinal

plants, Thapathali, Kathmandu, Nepal for providing necessary facilities. Dr Y. Ono,

Ibaraki University, Japan is also thanked for providing the valuable literatures,

Thanks are also due to Dr. G. Durrieu, Laboratoire de Botanique, Toulouse, France,

for going through the manuscript and necessary advices.

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Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1990, 11 (2): 129-144 129

Fungos do Brazil exsiccata découverts dans Herbier Mycologique

de Nouyelle-Calédonie.

par Jean MOUCHACCA

Laboratoire de Cryptogamie, Muséum National

d'Histoire Naturelle, 12 rue Buffon, F-75005 Paris.

RÉSUMÉ - Un listing informatisé champignon-plante-hôte a été réalisé, pour des

exsiccata de la série Fungos do Brazil, découverts dans l'Herbier Mycologique de la

Nouvelle-Calédonie actuellement présent à Paris. On y trouve des spécimens authen-

tiques de près de 300 taxons précisés par les mycologues de Recife.

ABSTRACT - A computerized listing fungus-host-plant is proposed for some exsic-

cata of the series Fungos do Brazil discovered in the Mycological Herbarium of

New-Caledonia, recently deposited at the Laboratoire de Cryptogamie. Authentic

Specimens of about 300 taxa described by Brazilian mycologists are present among

these exsiccata.

MOTS CLÉS : Champignon, Exsiccata, Fungos do Brazil.

Une mission récente à Nouméa, réalisée dans le cadre d'une des Ac-

tions Spécifiques du Muséum National d'Histoire Naturelle: Evolution et

Vicariance en Nouvelle-Calédonie, a permis de localiser l'Herbier

Mycologique des territoires français du Pacifique Sud. Cet Herbier comporte

près d'un millier de spécimens: il représente les efforts de collecte des

phytopathologues et des botanistes qui se sont succédés après la deuxième

guerre mondiale, à l'Institut Français d'Océanie de Nouméa, actuellement

un Centre de l'Institut Français de Recherche Scientifique pour le

Développement en Coopération ORSTOM.

Le classement des éléments de cet Herbier a révélé la présence d'un

nombre important d'exsiccata de matériel originaire du Brésil. Ce sont des

doubles de la série Fungos do Brazil, réalisée par l'équipe de A. Chaves

Batista qui dirigea l'Institut de Mycologie de l'Université de Recife jusqu'à

Sa mort soudaine en 1967. De même que les mycologues du Pacifique Sud,

Batista était largement interéssé par la taxonomie des champignons tropi-

caux. Il en est résulté un courant d'échanges d’informations entre Nouméa

Source : MNHN, Paris

130 J. MOUCHACCA

et Recife, comme le confirme la présence des exsiccata brésiliens en

Nouvelle-Calédonie. D'autre part, les étiquettes de certains spécimens de ce

territoire, révélent que leur identification a été assurée par des mycologues

brésiliens. Enfin, il est à noter qu'aucun élément de cette série ne figurait

dans les collections mycologiques du Laboratoire de Cryptogamie ni, n'est

apparemment présent, dans d'autres institutions scientifiques (Pfister,

Mycotaxon 23:1-141, 1986).

Le nombre important des noms de champignons et de lichens, figurant

sur les étiquettes des 341 planches composant ces exsiccata brésiliens, nous a

conduit à opérer un dépouillement informatisé de leurs contenus.

L'étiquette de chaque planche porte le nom de l'hôte - d'ailleurs beaucoup

sont indéterminés - et le (les) numéro sérié du champignon identifié et dont

le nombre atteint parfois une dizaine par planche. Les numéros sériés de ces

exsiccata sont discontinus et se rapportent à du matériel collecté dès 1954.

Le listing établi interésse près de 300 genres, simplement arrangé par

ordre alphabétique et représenté par 615 “entités spécifiques’: près d'une

centaine de ces dernières restent à préciser. Chaque taxon est suivi par le ou

les noms des plantes-hôtes respectives et le numéro sérié correspondant. Ce

listing reproduit fidèlement les informations des étiquettes examinées; seules

les erreurs typographiques des noms de champignons et de quelques plantes-

hôtes ont été corrigées. Aucun réexamen critique de ce matériel n'a été

entrepris.

Les épithètes binomiales relevées concernent des champignons apparte-

nant à divers groupements taxonomiques. L'examen des noms d'auteurs de

leurs binomes indique que ce matériel brésilien comporte des spécimens de

près de 300 taxons, espéces et variétés, précisés par les mycologues de Recife,

d'où l'importance de cette collection. Une partie de ces taxons se rattache à

83 genres proposés par A. Chaves Batista et ses collaborateurs (une liste des

travaux de Batista est publiée dans Sydowia 22, 1968); de ces genres, ceux

imprimés en caractéres gras, au nombre de vingt-trois, ne figurent pas dans

la derniére édition du Dictionary of the Fungi (Hawksworth et al., 1983).

Pour la réalisation de ce listing, les abbréviations suivantes ont été in-

troduites: — Batista: Bat; Bezerra: Bez.; Cavalcanti: Cav.; Ciferri: — Cif.;

Fonseca: Fon.; Nascimento: Nasc.; Taltasse: Talt.; Indéterminé: Indt.; var.:

v. Sa publication devrait conduire á une meilleure définition de la position

taxonomique de divers composants de la mycoflore brésilienne.

REMERCIEMENTS

Les responsables des Laboratoires de Phytopathologie, de Botanique et les ad-

ministrateurs du Centre ORSTOM de Nouméa, sont vivement remerciés pour les

facilités accordées lors de notre séjour en Nouvelle-Calédonie.

Source : MNHN, Paris

EXSICCATA FUNGOS DO BRASIL 131

Acarellina psidii Bat. & Maia / Psidium albidum 17624

Aciesia xylopiae Bat. & Bez. / Xylopia sp. 17055

Acleistiomyces rionegrensis Bat., Maia & Peres / Indt. 21488

Actinomucor sp. | Indt. 21005

Actinonema rosae (Lib.) Fr. | Rosa sp. 18636

Aderkomyces couepiae Bat. | Couepia bracteosa Benth. 21543

Ainsworthia roraimensis Bat. & Cav. | Indt. 38101

Ainsworthiomyces sterculiae Bat. & Bez. / Indt. 37439

Alternaria sp. | Sida sp. 17117 ; A. dianthicola Neergaard / Musa paradisiaca L.

30655

Amazonomyces palmae Bat. & Cay. / Palmae 29118 / Indt. 27662

1mazonotheca santiriae Bat. & Maia / Sterculiaceae 28927

Ampullifera brasiliensis Deighton | Rubiaceae 21838

Ampulliferella amaeboide Bat. & Сау. | Palmae 29117

Ampulliferopsis hipocretiacearum Bat. & Cay. | Palmae 29119 ; A. miriapoda Bat. &

Cay. / Palmae 29122

Anconomyces palmae Bat. & Сау. } Palmae 29130

Antennariella bahiensis Bat. | Byrsonima sericea DC. 11825 ; A. perseae Bat., Nasc.

& Cif. / Mangifera indica L. 13322 / Indt, 15790

Anthostomella paraguayensis Speg. | Indt. 21396

Aphanopeltis bauhiniae Bat. ; Hymenaea sp. 19482.

Aphanostigme solani Syd. | Solanum sp. 17290

Arachnopeziza alba Bat. € Bez. / Nectandra sp. 18997

Arthonia sp. | Psychotria sp. 18650; A. accolens Stirt. / Sapotaceae 44549 / Indt.

28567; A. orbicularia Bat. £ Bez. / Coucpia rufa Ducke 21639 ; A. palmaceae

(Mill Arg.) R.Sant. / Panicum latifolium L. 28799 ; A. trilocularis MülLArg. /

Psychotria sp. 18631 / Pterocarpus violaceus Vog. 18656

Arthrobotryum melanoplaca Berk. & Curt. / Mangifera indica L. 20718

Asbolisia citrina Bat. & Cif. | Quercus ruber 27117 ; A. ficina Bat., Nasc. & Cif. /

Mimosa caesalpiniifolia Benth. 17015

Asbolisiomyces ingae Bat. & Maia / Inga sp. 18776

Aschersonia sp. | Poraqueiba sericea Ful. 30796

Aspergillus sp. | Apocynaceae 30642 / Melastomataceae 20707 / Sapindaceae 22534 /

Indt. 15604 21003 23909 ruber (Sprieck. & Brem.) Thom & Church /

Artocarpus incisus L. 17214

Asperisporium caricae (Speg.) Maubl. / Carica papaya L. 16257

Aspilaima platoniae Bat. & Bez. / Platonia insignis Mart, 19358

Asterina benguetensis Petr. / Allophylus edulis St.Hil. 18405 ; A. vagans Speg. |

Solanum sp. 17291

Asterinella puiggari Speg. / Miconia sp. 20416

Asterolibertia malpighii Bat. & Maia / Xylopia sp. 18841 ; 4. pogonophorae Bat. &

Maia / Pogonophora schomburgkiana Miers ex Benth. 17409

Asteromella sp. | Indt. 21671 ; A. ovata Thiim. / Hymenaea sp. 19479 ; 4. phalaridis

Syd. / Glycoxylon inophylon (Miq.) Ducke 22425 ; 4. pyricola (Sacc. & Speg.)

Moesz / Echites cururu Mart. 22076

Asterostomella meliosmae Bat. & Bez. / Euphorbiaceae 28487

Source : MNHN, Paris

132 J. MOUCHACCA

Asterostomula bauhiniae Bat. & Bez. / Melloa populifolia Britton 17010 ; A.

premnae Bat. & Nasc. / Allophylus edulis St.Hil. 18406

Astrabomyces sp. | Palmae 21410; 4. amazonensis Bat. & Cay. / Palmae 21254 ;

Astragoxyphium catalpeae Bat., Nasc. & Cif. / Cocos nucifera L. 18547

Atractina sp. | Brosimum sp. 21873

Aulaxina microphana (Vain) R.Sant. / Patava sp. 21450 ; A. quadrangula (Stirt.)

R.Sant. / Pisonia tomentosa 19089 / Tocoyena formosa 19009

Aulographum sp. | Rosaceae 21673 / Indt, 28734 ; A. tropicale Rehm v. major Bat.

| Anonnaceae 28920 / Hippocrateaceae 23995 / Indt. 21628 27679

Bacidia bilimbioides (R.Sant.) Bat. | Nectandra sp. 18935 ; B. rhapidophylli (Rehm)

A.Zahlbr. / Lauraceae 21470

Balladinocallia amazonensis Bat. & Silva (? Balladynocallia Bat. 1965) |

Sterculiaceae 29108

Balladyna conensis Syd. | Indt. 28607 ; B. leonensis Syd. / Indt. 21242

Balladynopsis portoricensis (Stev. € Dalb.) Petr. v. macrocarpa Bat. & Bez.

Meleagrinex pernambucana Arr.Cam. 21618

Belaina asclepiadis Bat. & Peres / Asclepia curassavica L. 18893

Bonaria lithocarpi (Miller & Bonar) Bat. / Anonna salzmanii DC. 19207

Brefeldiella brasiliensis Speg. / Indt. 27577

Briosia platoniae Bat. & Bez. | Platonia insignis Mart. 18878

Byrsomyces olivaceus Bat. & Cay. / Myrtus sp. 28692 / Indt. 27661

Byssoloma chlorinum (Vain.) A.Zahlbr. / Cocos coronata 30499 / Lauraceae 21467

Palmae 30608 / Platonia insignis Mart. 19363 ; B. polychromum (Mill.Arg.)

A.Zahlbr. / Lucuma grandiflora A.D.C. 18884 / Indt. 18890 ; B. tricholoma (Mont.)

A.Zahlbr. / Euphorbia papillosa St.Hil. 19542 / Poraqueiba sericea Ful. 30791 /

Indt. 21496

Calenia sp. | Bignoniaceae 44575

Calonectria leucorrhodina (Mont.) Speg. / Galactia tenuiflora W. & B. 17240 /

Ximenia americana L. 20022

Calothyrium leptosporum Theiss. / Indt. 1241 28052

Camillea cyclops Mont. | Brosimum parinarioides Ducke 20658

Capnocifferia concinna (Fraser) Bat. / Quercus ruber 27119

Capnogonium sp. | Lauraceae 24059 / Lecythidaceae 21318 / Indt. 28162 ; С.

amazonense Bat. & Peres / Jambosa vulgaris DC. 20673 ; C. polymorphum Bat. &

Peres / Burseraceae 27866 / Myristicaceae 27686

Capnophialis phaeophragma Bat. & Cav. | Palmae 29121

Caripia montagnei Fr. | Bois mort 6111

Catacauma subcircinans (Speg.) Theiss. & Syd. / Psidium sp. 19167 ; С.

truncatisporum Viegas v. macrocarpa Bat. & Peres / Myrtaceae 18996

Catanella obscura Bat. & Peres (?. Catenella Bat. & Peres 1963) / Andira fraxinifolia

16273

Ceramothyrium citricolum Bat. & Nasc. | Terminalia fagifolia 18712 ; C. jambosae

Bat. & Peres / Jambosa vulgaris DC. 20671

Cercospora fusimaculans Atk | Panicum maximum Jacq. 28742 ; С. genipae Rengel /

Genipa americana 12443 ; C. henningsii All. / Manihot utilissima Pohl. 1090 ; C.

musae Zimm. v. paradisiae Bat. & Garnier / Musa paradisiaca L. 30658 ; C.

Source : MNHN, Paris

EXSICCATA FUNGOS DO BRASIL 133

palmae-amazonensis Bat. & Cav. | Palmae 21246 ; C. ricinella Sacc. & Berl. /

Ricinus communis L. 17035

Cerotelium fici (Butl.) Arth. / Ficus carica L. 18616

Chaetasbolisia falcata Miller & Bonar / Byrsonima cydonifolia 13009 / Polyscias

guilfoylei Bailey 16159

Chaetomeliola boavensis Cif. | Anonnaceae 21764

Chaetomium fieberi Cke | Artocarpus incisus L. 17215

Chaetosaccardinula fuliginea Bat. £ Holanda / Indt. 21670

Chroodiscus sp. j Indt. 21899 ; C. coccineus (Leight.) MúlLArg. / Apciba tibourbon

Aubl. 28390 / Cocos coronata 30494 / Couepia rufa Ducke 18953 / Palmae 29127 /

Psychotria sp. 18912 / Indt. 21338 27663

Cicinnobella calva Arnaud | Pera sp. 21

Cifferiotheca brosimi Bat, & H.Lima / Hippocrateaceae 21516

Circosia moquileae Bat. & Maia (? Cirsosia Arnaud 1918) / Olea europaea L. 16146

Cladosporium fulvum Cke | Araceae 18662 / Patava sp. 21453 / Indt. 17525 : C.

herbarum Lk v. fimicola March. / Thalia geniculata L. 18521

Coccomyces coronatus (Fr.) DNtrs / Asclepia curassavica L. 18896

Cocconia xylopiae Bat. & Perez / Xylopia sp. 18840

Coleophoma sp. | Zingiberaceae 30863 ; C. caseariae Bat. & Cav. / Casearia sp.

21639 ; C. casearüfolii Bat. & Cav. / Lucuma sp. 27751

Conidomyces leptosperma (Müll.Arg.) R.Sant. / Indt. 29038

Coniothyrium fuegianum Speg. | Panicum maximum Jacq. 28743 ; C. pallido-fuscum

Sacc. / Oryza sativa L. 16113

Cornularia nectandrae Bat. & Bez. / Nectandra sp. 18998

Суға licaniae Bat. & Maia / Cocos coronata 30498 / Couepia bracteosa Benth.

21550

Darluca filum (Bir.) Cast. / Manihot utilissima Pohl. 17201

Deltomyces myrtacearum Bat., Bez. & Cay. / Licaria sp. 28026

Deslandesia paulensis (Rehm) Bat. / Genipa americana 12442 / Quercus ruber

27118

Desmidophorus concentricus Bat. & Cay. / Abuta sp. 30803 / Burseraceae 27865 /

Indt. 27675

Dictyopeltis sp. | Inga sp, 20970 ; D. costi Bat. / Sterculiaceae 28926

Dictyosporium hymenaearum Bat. & Bez. / Hymenaea sp. 19478

Dictyothyrium fimbriatum Bat, & H.Lima / Indt. 23609

Didymopeltis sp. | Passiflora sp. 21506 ; D. pini Bat. / Indt. 16266

Didymopyrostoma xylopiae Bat. & Cay. / Abuta sp. 30802 / Burseraceae 27859 /

Lecythidaceae 44637 / Licaria sp. 28031 / Palmae 29123 / Poraqueiba sericea Ful.

30786 / Protium sp. 27682 / Rosaceae 23614 / Indt. 27674 37441 44285

Dimerium advenum Petr. | Tabebuia caraiba (Mart.) Bureau 18871 ; D. leonense

Hansf. / Rubiaceae 21291 ; D. minutum (Pat.) Sacc. / Indt. 15602 ; D. oblongum

Syd. / Euphorbia papillosa St.Hil. 16101 ; D. pulvuraceum Speg. / Ampelidaceae

21534 / Eugenia insipida 17085 ; D. venturioides (Sacc. & Berl.) Theiss. / Galactia

tenuiflora W. & B. 17243 / Indt. 17486

Diplodia sp. | Clusia insignis Mart. 21483

Discosiella cylindrospora Syd. | Centella sp. 28547

Source : MNHN, Paris

134 J. MOUCHACCA

Dothiomyces couepiae Bat. & Bez. / Couepia rufa Ducke 21645

Echidnodes microspora (Chard.) Seaver & Chard. / Lauraceae 21465

Elachopeltis esenbeckiae Bat. & Bez. / Inga sp. 29065 ; E. poraqueibae Bat. & Сау.

Poraqueiba sp. 20679

Ellattopyenis protium Bat. & Сау. | Protium sp. 27680

Ellisiellina biciliata Ces. v. solani Bat. & Bez. / Solanum sp. 17289

Enterographa sp. Panicum latifolium L. 28804

Enthallopycnidium rhododendri Bat. / Rhododendron sp. 13482

Epistigme erodens Bat. & Garnier / Indt, 28051 ; E. nidulans Syd. | Tabebuia

caraiba (Mart.) Bureau 18872

Eremotheca sp. | Andira fraxinifolia 16272 / Indt. 16270 ; E. ingae Bat., Peres €

Fon. / Inga sp. 20969 ; E. sellowiana Bat. & H.Lima / Jambosa vulgaris DC. 20669

Fenestella ulmicola Ell. & Ev. | Paullinia pinnata 16170

Fraserula australiensis Syd. v. melloae Bat. & Garnier / Melloa populifolia Britton

17008

Fumago vagans Pers.: Sacc. / Psidium guajava L. 12582

Fusarium sp. | Oryza sativa L. 16116

Gilmania pulchra Bat., Bez. & Cav. | Protium sp. 21600 / Indt. 21344

Glocosporium sp. | Sterculia sp. 1182 ; G. mangiferae P.Henn. | Anacardium occi-

dentale L. 20715

Gnomoniella tubaeformis (Tode) Sacc. у. minor Bat. & Talt. / Oreodoxa oleracea

Mart. 16238

Graphiola phoenicis (Moug.) Poit. / Phoenix dactylifera L. 1226

Guignardia sp. | Glycoxylon inophylon (Miq.) Ducke 22426 ; G. scabiosae (Lamb. &

Fautr.) Arx & Muller / Poraqueiba sp. 20680

Gyalectidium sp. | Indt. 28574

Hansfordiella lichenicola Bat. & Maia | Gustavia angusta L. 18787

Hansfordiopeltella brosimi Bat. & Bez. | Brosimum sp. 21872

Hansfordiopeltis cupaniae Bat. & Bez. / Cupania sp. 17047 ; H. erythroxylit Bat. &

Тай. / Lauraceae 22346 ; H. shabundensis Bat. £ Costa / Lecythidaceae 21478

Helicominopsis sp. | Hippocrateaceae 21518 / Indt. 21626 ; H. jambosae Bat., Bez. &

Peres / Indt. 21002

Helikedomyces sp. | Lauraceae 24056 ; H. jambosae Bat., Bez. & Peres | Jambosa

vulgaris DC. 20668

Helminthosporium sp. | Indt. 15990 ; H. acuum Karst. / Oryza sativa L. 16112 ; H.

capense Thiim. | Garuya pinnata Roxb. 19985 / Rubiaceae 21290 ; H. cesatii Mont.

| Paullinia pinnata 16171 ; H. decorum Ces. / Oryza sativa L. 16114 ; H.

doryocarpum Mont. | Esenbeckia macrocarpa Hub. 17175 / Eugenia insipida 17087

/ Oreodoxa oleracea Mart. 16240 / Indt. 21328 ; H. maculatum Sace. | Indt, 13171 ;

H. melioloides Sacc. | Indt. 12598 ; H. oryzae Miyabe & Honii / Oryza sativa L.

19390 ; H. quareicola F.L.Stevens / Indt. 28054

Hendersonia consociata Petr. / Licaria sp. 28 ; H. graminicola Lév. | Panicum maxi-

mum Jacq. 28744

Hiospira sp. | Burseraceae 27861 / Hippocrateaceae 23998 / Protium sp. 30896 /

Indt. 25174 27672

Hormisciella rubi Bat. | Pitcairnia angustifolia 13379

Hormisciomyces bellum Bat. & Carneiro | Vitis sp. 13318 13435

Source : MNHN Paris

EXSICCATA FUNGOS DO BRASIL 135

Hyalectidium sp. | Indt.

Hysterostoma microspora Doidge / Rubus sp. 14213

Lambosia ocoteae Bat. & Maia / Indt. 18891

Lasiodiplodia sp. | Petroa sp. 38120 ; L. theobromae (Pat.) Gr. & Maubl. /

Lauraceae 21468 / Lucuma sp. 27750

Lasioloma arachinoideum (Kremp.) R.Sant. | Palmae 30607

Leberida didymopanacis Bat. & Peres | Didymopanax morototoni Dechne & Pach.

18852

Leberidia sp. | Protium sp. 19051

Lecothyrium cylindricum Bat. & Peres y. lichenicola Bat. & Cav, | Palmae 29114 /

Indt. 21895

Lembosia sp. | Nectandra sp. 18937 ; L. ampulligera Speg. | Cordia sp. 15907 ; L.

curassavica Bat. £ Peres / Asclepia curassavica L. 18894; L. inconspicua Syd.

Coumarouna sp. 18873 ; L. lauraceicola Bat. / Lauraceae 21466 ; L. melastomatum

Mont. / Miconia sp. 20417 ; L. ocoteae Bat. & Maia / Ocotea sp. 17196 ; L.

patouillardi Sacc. & Syd. / Carpotroche brasiliense 17022 ; L. vismiae Bat. / Vismia

sp.

Leptosphaeria eustomoides Sacc. | Panicum maximum Jac

Sacc. / Oryza sativa L. 16115

Leptostroma sp. | Sapindaceae 21574

Leptothyriella cordiae Bat. & Peres (? Leptothyrella Sacc. 1885) / Cordia sp. 15906

Leptothyrium sp. | Ambelania sp. 21711 ; L. myrtacicola Bat. & H.Lima / Myrtaceae

2445 ; L. roureae Bat. & H.Lima / Rourea glabra H.B.K. 20435

Leptoxyphium lanosum Bat. & Cav. | Palmae 21245

Limacinula zantedeschiae Bat. | Zantedeschia aethiopica 11820

Linochora laboriosa Bat. £ Maia / Lecythidaceae 21317

Lopadium sp. | Indt. 21199 ; L. carneum Müll.Arg. / Cocos coronata 30501 ; L.

couepiae Bat. / Couepia bracteosa Benth. 21545 ; L. didymopanacis Bat. & Peres /

Didymopanax morototoni Dechne & Pach. 18845 ; L. paudalhense Bat. & Peres

Didymopanax morototoni 18844 / Patava sp. 21452

Lyromma nectandreae Bat. & Maia / Nectandra sp. 18764 / Indt. 37438

Mammaria nectandreae Bat. & Maia / Nectandra sp. 21216

Manginella anonae Bat. & Maia / Anonna salzmanii DC. 18943

Marasmius sp. | Eugenia sp. 28377 / Indt. 28591

Mazosia sp. | Bignoniaceae 24191 / Hippocrateaceae 21520 / Inga sp. 29070 /

Lauraceae 22343 / Myrtus sp, 28695 / Protium sp. 29049 / Sapotaceae 28786 / Indt.

21331 23913 27669 ; M. dispersa (Hedrick) R.Sant. / Bignoniaceae 21666 /

Eschweilera sp. 24178 / Gustavia angusta L. 18792 / Nectandra sp. 18642 /

Passiflora sp. 21509 / Protium sp. 18783 30884 / Psychetria sp. 18913 / Tocoyena

formosa 19005 ; M. melanophthalma v. macrospora Bat. & Bavlich / Protium sp.

24117 ; M. melanophthalma (Müll.Arg.) R.Sant. / Anonna salzmanii DC. 19205 /

Anonnaceae 28921 / Apeiba tibourbon Aubl. 28393 / Bignoniaceae 24190 / Cocos

coronata 30491 / Couepia rufa Ducke 18954 / Didymopanax morototoni Dechne &

Pach. 18849 / Euphorbiaceae 28491 / Inga sp. 18779 / Nectandra sp. 18767 / Palmae

30614 / Platonia insignis Mart. 19361 / Pogonophora schomburgkiana Miers ex

Benth. 17405 / Protium sp. 24116 30895 / Psychotria sp. 18648 / Sterculiaceae 28931

/ Indt. 16176 18932 21497 21896 23910 27912 28541 28587 ; M. palmae Bat. & Silva

| Myrtaceae 44482 ; M. phyllogena (Nyl.) A.Zahlbr. / Eschweilera ovata (Camb.)

8745; L. promontorii

Source : MNHN, Paris

136 J, MOUCHACCA

Mart. 18773 / Oreodoxa oleracea Mart. 16241 / Tocoyena formosa 19008 / Indt.

18888 29039 ; M. praemorsa (Stirt.) R.Sant. / Astronium fraxinifolium 19163 /

Couepia rufa Ducke 18950 / Hymenaea sp. 18665 / Palmae 29132 / Psychotria sp.

18632 / Indt. 18928 ; M. praemorsa (Stirt.) R.Sant. v. macrocarpa Bat. & Tal. /

Psychotria sp. 18647 ; M. rubropunctata R.Sant. | Connaraceae 21320

Melanospora sp. } Clusia insignis Mart. 21484

Meliola sp. | Ampelidaceae 21531 / Galactia tenuiflora W. & B. 17242 / Loranthus

pyrifolius H.B.K. 30871 / Mabea sp. 21885 / Psidium araca Raddi 20690 / Indt.

9 15989 17485 ; M. amomicola Stev. v. longispora Bat. | Amomis

'ophyllata (Jacq.) Krug & Urban 14100 ; M. bonsrii Bat. & Nasc. 21198 ; M.

onimicola Stevens & Tehon / Malpighiaceae 21475 ; M. caesariicola Hansf. |

Indt. 21593 ; M. canarii Syd. v. lobata Bat. & Maia / Euphorbia papillosa St.Hil.

19537 ; M. casearia-guianensis Hansf. | Sabicea cinerea Aubl. 16133 ; M. decidua

Speg. / Mangifera indica L. 15601 ; M. glabra (Berk. & Curt.) Hansf. v.. major

Hansf. / Sabicea cinerea Aubl. 16134 ; M. lirseicola Hansf. | Cassytha filiformis L.

28094 ; M. lucumae F.L.Stevens. Lueuma sp. 27747 ; M. mangiferae Earle /

Mangifera indica L. 20717 ; M. parreirae Bat. / Cissampelos parreira 13066 ;

paulliniana Bat. & Nasc. | Cocos coronata 30510 ; M. protii Stev. / Protium sp.

18781 / Protium heptaphyllum (Aubl.) Mart. 18703 ; M. protii Stev. v. minor Bat.

& Peres / Protium 5р. 20090 ; M. psidii Fr. v. macrospora Bat. & Peres / Psidium

guajava L. 17100 ; M. sapindi-esculenti Hansf. | Talisia esculenta Raddi 11429 ; M.

tabernaementanae Speg. | Indt. 27578

1.

Melophia paraopebensis Bat. & Peres | Myrtaceae 19150

Metasphaeria albescens Thiim. / Oryza sativa L. 19389

Microdiplodia microcarpa (Otth) All. / Indt. 18775

Micropeltella asclepiadis (Bat. & Vital) Bat. / Lauraceae 24060 ; M. bogoriensis

Ново. / Eperma schomburgkis Bth. 21462; M. leoniae (P.Henn.) Bat. / Indt. 30676;

M. oleandri (Br. & Harkn.) Bat. / Hippocrateaceae 21515 ; M. vismiae Bat., Peres &

Holanda / Abuta sp. 30799 / Inga sp. 23686 / Myrtus sp. 28691 / Sapindaceae 22533

/ Indt. 24199

Micropeltidium sp. | Bauhinia forficata Link. 28107 / Indt. 28227 28576 ; M. crotonis

Bat. & H.Lima v. macrocarpus Bat. & Valle / Indt. 28099 ; M. dignotae (Bat.) Bat.

/ Protium sp. 29051; M. gustaviae Bat. & H.Lima / Luchea paniculata Mart. 20542;

. moronobeanum Bat., Peres de Fon. | Rosaceae 20961 ; M. roureae Bat. &

H.Lima | Rourea glabra H.B.K. 20436

Micropeltis sp. | Ambelania sp. 21712 / Casearia sp. 21660 / Inga sp. 20971 /

Lecythidaceae 21481 / Palmae 30616 / Passiflora sp. 21505 / Sapindaceae 21575 /

Indi. 21004 21489 29055 ; M. alchornea Bat. & Peres / Bombax rigidifoliae 22055 ;

M. bakeri Bat. & Peres / Inga sp. 29064 ; M. bignonaceifolii Bat. & Campbell /

Emmantum fagifolium Desv. 27929 ; M. bignoniacearum Bat. & Campbell / Indt.

28235 ; M. clava Toro / Protium sp. 30894 ; M. clava Toro v. major Bat. & Cav. /

Indt. 21854 29036 ; M. clavatispora Bat, & Campbell / Bignoniaceae 23946 ; M.

clavatispora Bat. & Campbell v. macrospora Bat., Peres & Fon. / Clusia insignis

Mart. 21482 / Sapotaceae 28781 ; M. connarena Bat. & H.Lima / Licania tiriuva

Cham. & Schlecht. 18568 ; M. crassoseptata Bat. & Fon. / Guatteria subse:

Mart. 27976 ; M. divaricata Bat. & Garnier / Bauhinia forficata Link. 28105 ; M.

duoseptata Bat. | Bignoniaceae 21667 / Connaraceae 21322 / Rubiaceae 21997 /

Sapotaceae 20698 ; M. duoseptata Bat. v. macroascus Bat. / Bignoniaceae 24189 /

Marantaceae 24064 / Rubiaceae 21661 ; M. duoseptata Bat. v. manaoensis Bat. &

Peres / Bignoniaceae 24188 / Eschweilera sp. 24181 / Rosaceae 21675 ; M.

erythroxylii Bat. & H.Lima / Indt. 21855 ; M. euphorbiae Bat., Fon. & Shome /

Source : MNHN, Paris

EXSICCATA FUNGOS DO BRASIL 137

Virola surinamensis (Rol.) Warb. 20529 ; M. gigas Bat. & Maia / Indt. 27918 : M.

grandis Bat. & Peres / Mabea sp. 21378 ; M. impae Bat. & Peres / Indi. 29008 M.

lecythisii Bat. & H.Lima / Lecythis sp. 2011 ; M. magna Bat. & Campbell /

Lauraceae 22349 / Indt. 21627 ; M. mysisticearum Bat. & Peres / Luchea paniculata

Mart. 20540 ; M. philodendri (Stevens & Manter) Bat. / Indt. 28160 : M.

pogonophoreana Bat. & H.Lima / Pogonophora schomburgkiana Miers ex Benth.

2476 ; M. rionegrensis Bat. & Fon. | Bignoniaceae 24186 / Burseraceae 27864 /

Eschweilera sp. 24180 / Euphorbiaceae 28488 / Rosaceae 21357 / Sterculiaceae

28929 / Indt. 21592 27678 ; M. sapindicola Bat. & Bez. | Cupania sp. 17048 : M.

shombukkianae Bat. | Luchea paniculata Mart, 20539 ; Af. smilacis Becli / Indt.

21239 ; M. sudamericana Bat. & Cav. | Abuta sp. 30800 ; M. tabernamontanifolit

Bat, / Protium sp. 24112 ; M. trimera Sacc. / Protium sp. 21599 ; M. variabilis Bat.

& Garnier / Bignoniaceae 23947

Microthyriella sp. | Hippocrateaceae 23997 / Indt, 37442 : M. anthurifolit Ba

Nasc. , Bignoniaceae 21663 / Jambosa vulgaris DC. 20670 / Sapindaceae 28

guineensis Roger / Sapindaceae 20703 ; M. intricata (Ell. & Mart.) Theiss.

Rosaceae 23615 ; M. oblongotheca Bat., Peres & Cav. / Indt. 24198 ; M. peaseri

Hansf. / Luchea paniculata Mart. 20541 ; M. uvariae (P.Henn.) Theiss. / Couepia

bracteosa Benth. 21752 ; M. vagabundis Bat. & Cav, | Abuta sp. 30797

Microthyrium paraguayensis (Speg.) Bat. | Retiniphyllum schomburgkii Bth. 20659 ;

M. pinophyllum (Hóhn.) Petr. / Pinus lambertiana Dougl. 15977

Microxyphiella commista Bat. & Cif. / Indt. 15794

yphiomyces sp. | Palmae 21409 ; M. capitulatum Bat. & Bez. / Couepia rufa

Ducke 21641 / Lauraceae 24051 ; M. intermedius Bat., Bez. & Cav. | Palmae 29115

Indt. 21347 ; M. manaoensis Bat., Valle & Peres / Ampelidaceae 21530 / Indt.

M. minutus Bat. & Cav. | Lauraceae 24050 / Palmae 21244 / Poraqueiba

ul. 30790 / Indt. 27664

Microxyphiopsis brysonimae Bat. / Byrsonima sericea DC. 11823 ; M. psidit Bat. |

Psidium guajava L. 11919

Microxyphium sp. (2 Microxiphium (Harvey ex Berk. & Desm.) Thüm. 1879) /

Jambosa vulgaris DC. 20675 / Mimosa caesalpiniifolia Benth. 17016 ; M.

aciculiforme Cif., Bat. & Nasc. / Byrsonima cydonifolia 13007 / Eugenia axillaria

Willd. 13481 ; M. artocarpi Bat., Nasc. & Cif. Psidium guajava L. 11920 /

Zantedeschia aethiopica 11819 / Indt. 15787 17527 ; M. brasiliense Bat. / Indt.

15788 ; M. brysonimae Bat. | Byrsonima sericea DC. 11822 ; M. columnatum Bat.

Cif. & Nasc. / Jambosa malaccensis 11900 / Mangifera indica L. 13321 / Quercus

ruber 27120 ; M. cylindricum (Yam.) Bat. & Cif. / Indt. 17526 ; M. jambosae Bat. |

Jambosa malaccensis 11420 11901 ; M. leptospermi Fisher / Indt. 15789 ; M.

Philippinense Cif. £ Bat. / Polyscias guilfoylei Bailey 16160 ; M. secundum Bat. &

Cif. / Licania rigida Benth. 18546

Mindoa batistae Bez, & Valle / Indt. 21238

Monilia sitophylla (Bolt.) Sace. / Bombax munguba Mart. 28225

Monodorus hendersonianum Bat. & Bez. | Psychotria sp. 18906

Morenoella phillipsii Doidge / Hymenaca sp. 16195

Morfea moniliforme (Fraser) Cif. & Bat. / Alfinea sp. 13308

Mycosphaerella sp. | Musa paradisiaca L. 30657 ; M. clusiae Stevens / Coumarouna

Sp. 21596 ; M. didymopanacis (L.E.Miles) Sacc. / Didymopanax morototoni Dechne

& Pach. 18850 ; М. guttiferae Miller / Clusia insignis Mart. 21485 ; M. minor

(Karst.) Johnson / Coumarouna sp. 18875 ; M. poraqueibae Bat. & Cav. /

Poraqueiba sp. 20681 ; M. punctiformis (Pers.) Munk / Coffea arabica L. 20346 ; M.

23 M.

Source : MNHN, Paris

138 J. MOUCHACCA

tahitensis (Sacc.) Bat. / Palmae 21252 ; M. tocoyana Bat. & Peres / Hymenaea sp.

19480

Mycostevensonia sp. | Indt. 28732

Mysia sp. | Myrtaceac 28835 / Indt. 28588 ; M. combreti Bat. | Apocynaceae 22014

/ Guatteria subsessilis Mart. 27969 / Inga sp. 18780 / Melastomataceae 44272 /

Psychotria sp. 18646 18910 / Pterocarpus violaceus Vog. 18653 / Indt. 19014 27920

28542 ; M. microspora Bat. & Cav. / Indt. 27658

Myxothyriopsis astronifolium Bat. & Vital / Bauhinia forficata Link. 28108

Naetrocymbe perparum Bat. / Mimosa caesalpiniifolia Benth. 17011

Naothyrsium brosimii Bat. & Bez. / Brosimum discolor 18796

Neustica lafoensiae Bat. & Bez. / Lafoensia replicata Pohl. 17413

Oncosporomyces bellum Bat. & Maia / Indt. 21498

Opegrapha sp. | Desmoncus sp. 17392 / Indt. 16177 ; O. duckei Bat., Bez. & Cav.

Indt. 21342 ; O. filicina Mont. / Hymenaea sp. 18667 / Inga sp. 18778 / Nectandra

sp. 18643 / Platonia insignis Mart. 18879 / Pogonophora schomburgkiana Miers ex

Benth. 17408 / Psychotria sp. 18633 18649 18911 / Indt. 18689 ; O. puiggardii

Müll.Arg. / Anonna salzmanii DC. 19211 / Xylopia sp. 17267

Ophiociliomyces richaeriae Bat. £ H.Lima / Aniba rosedora Ducke, 28430

Oswaldoa gymnosporiae Bat. | Indt. 27676 ; O. paypayriae Bat. / Bignoniaceae

23948

Palawania brosimii Bat. & Bez, / Brosimum discolor 18797

Parapeltella sp. | Indt. 23611 ; P. alchornea Bat. & Peres / Protium sp. 21601 ; P.

anonacearum Bat. & Cay. / Bignoniaceae 23949 ; P. anthuriana Bat. & Nasc. /

Indt. 16269 ; P. caesariae Bat. & H.Lima / Burseraceae 28146 ; P. coffeicola

(P.Henn.) Bat. / Indt. 21594 ; P. erythroxylii Bat. / Rourea glabra H.B.K. 20415 /

Sapotaceae 28783 ; P. ourateae Bat. & H.Lima / Andira fraxinifolia 16271 ; P.

pinastri Bat. | Protium sp. 20092 : P. pitya (Sacc.) Bat. / Cupania sp. 16161 /

Rourea glabra H.B.K. 20437 ; P. portoricensis (Speg.) Orejuela / Xylopia sp. 21559 ;

P. rosacearum Bat. / Bignoniaceae 24185 / Rosaceae 21672 ; P. soroceae (Bat. &

Gay.) Bat. / Leguminosae 21422 / Indt. 21492

Parasteridiella ximeniae (Bat. & Silva) Bat. & Maia / Ximenia americana L. 20020

Parasterina abyssiniensis Bat. & Maia / Indt. 21706 ; P. acanthopoda (Speg.) Müll.

Arg. / Euphorbia papillosa St.Hil. 16102 ; P. batistae Maia & Arx / Galactia

tenuiflora W. & B. 17241 ; P. casearicola (Hansf.) Bat. / Casearia sp. 19455 ; P.

champereiae Bat. | Lafoensia replicata Pohl. 17415 ; P. cupaniae (Bat.) Bat.

Ximenia americana L. 20023 ; P. pemphidioides (Ces.) Theiss. / Indt. 16267

Parasterinopsis caesalpinae Bat. & Maia | Albizia sp. 17287 | Caesalpinia ferrea

Mart. 15988

Parmularia hankei (Nees) Rehm / Styrax sp. 19101

Parodiopsis perae Arnaud | Pera sp. 21417

349) | Hymenaea sp. 19481

Peltaster bertholletiae Bat., Maia & Peres / Bertholletia excelsa Berg. 20665 / Palmae

21407 ; P. fimbriatus Bat. & Cav. | Licaria sp. 28030 / Myristicaceae 27687 /

Protium sp. 27681 : P. fimbriatus Bat. & Cav. v. minor Bat. & Cav. | Abuta sp.

30804 ; P. fusisporus Bat. & Cav. / Hippocrateaceae 23996 / Sapotaceac 28784

Indt. 27673 ; P. ingae Bat. & Maia / Rosaceae 23616

Peltasterella ocoteae Bat, & Maia / Asclepia curassavica L. 18895.

Penicillium sp. | Bombax munguba Mart. 28226

Passarola sp. (? Passalora Fr

Source : MNHN Paris

EXSICCATA FUNGOS DO BRASIL 139

Periconia sidae Bat. & Bez. | Musa paradisiaca L. 30656 / Sida sp. 17118

Pestalotiopsis mangiferae (P.Henn.) Steyaert / Jambosa malaccensis 18543

Petrakina pernambucensis Bat. & Maia / Xylopia sp. 17403

Phaeochaetia setosa (Zimm.) Bat. & Cif. / Byrsonima sericea DC. 15621

Phaeodimeriella guarapiense (Speg.) Speg. / Ximenia americana L. 20021 ; P.

parvula (Cke) Hansf. | Albizia sp. 17288

Phaeofabrea parahybensis Bat., Machado & Maia / Nectandra sp. 20289 21214

Phaeophragmeriella cirsosiae Bat, / Olea europaea L. 16145

Phaeophycopsis amazonensis Bat. £ Peres / Jambosa vulgaris DC. 20672

Phaeosaccardinula caucasica (Woronich.) Hansf. / Byrsonima sericea D

samoensis Höhn. / Loranthus pyrifolius H.B.K. 30870 ; P. vera Bat. & Cil

15795

Phallomyces palmae Bat. & Valle / Couepia bracteosa Benth. 21547 / Palmae 30612

Poraqueiba sericea Ful. 30794

Phialetea aerospora Bat. & Nasc.

14099 / Casearia sp. 19456

Philonectria carpinensis Bat. & Maia / Garuga pinnata Roxb. 19983 ; P.

meliolaceicola Bat. & Maia / Indt. 15991

Phomachora eucalypti Syd. | Palmae 18570

Phomatospora anacardicola Bat. | Orbygnia speciosa L. 1136.

Phragmidium disciflorum (Tode) J.F.James / Rosa sp. 18635

Phragmopeltheca psidii Bat. £ Maia / Psidium albidum 17629

Phragmoxyphium psychotriae Bat. / Byrsonima sericea DC. 11826

Phyllachora sp. | Burseraceae 27860 ; P. brosimii Bat. & Bez. / Brosimum sp. 21870;

P. nectrandicola Speg. į Nectandra sp. 18999 ; Р. roureae Syd. | Rourea glabra

H.B.K. 20084

Phyllosticta sp. | Coumarouna sp. 21597 / Moraceae 30033 ; P. berthellotiae Bat.,

Maia & Peres / Bertholletia excelsa Berg. 20666 ; P. confertissima Ell. & Ev.

Carpotroche brasiliense 17021 ; P. cylindrosporica Bat. & Bez. | Connaraceae 21326:

P. hispida Ell. & Dearn. / Panicum maximum Jacq. 28746

Piricauda paraguayense (Speg.) Moore v. echinulata Bat, & Maia / Allium cepa L.

18763

Piricularia whetzelit (Chupp.) Ba

Placosphaeria sp. | indt. 1247

Plectopyenis amazonensis Bat. £ Maia / Abuta sp. 30801 / Indt. 29073 ; P.

bignoniacearum Bat. & Cav. / Protium Sp. 27684 ; P. coccolobae Bat. & Vital

Bignoniaceae 29007 / Euphorbiaceae 29013 / Protium sp. 30893 / Rosaceae 20960

21674 / Sapindaceae 28251 / Indt. 29060 29076 30675

Plenocatenulis magnoliae Bat. £ Cif. | Cocos coronata 30509 / Leguminosae 18637

Indt. 18686 29061

Plenotrichaius hiloensis Bat, & Bez. | Euphorbiaceae 29014 / Licaria sp. 28032 ; P.

swartziae Bat. & Valle / Abuta sp. 30805 / Bignoniaceac 23950 / Euphorbiaceae

29016 / Swartzia sp. 20691

Pleurophomyces palmicola Bat., Bez. & Cav. / Indt. 21345

Podosporium sp. | Protium sp. 20093 ; Р. aciculare Sacc. & Paol. / Ipomoea sp.

2047; P. dialiumii Bat, | Dialium divaricatum Vahl. 13048 / Piptocarpha tetrantha

Urb, 14028 ; P. insipidum Bat. & J.A.Lima / Eugenia insipida 17086

1821 ; P,

/ Indt.

/ Amomis caryophyllata (Jacq.) Krug & Urban

- & Garnier / Argemone mexicana 17623

Source : MNHN, Paris

140 J, MOUCHACCA

Podoxyphiomyces manaoensis Bat., Valle & Peres Cocos coronata 30503

Podoxyphium ampullaceum Bat. & Maia / Eugenia axillaria Willd. 13480 ; P.

azevedoi Bat., Nasc. & Cif. / Artocarpus incisus L. 15909 / Byrsonima sericea DC.

15620 / Mimosa caesalpiniifolia Benth. 17014 ; P. yuccae Bat., Nasc. & Cif. v.

polymorphum Bat. & Herrera / Quercus ruber 27115

Poikilosperma scutellare Bat. & Bez. | Brosimum sp. 21869

Polyrhizon fernandoi Bat. & Peres / Loranthus pyrifolius H.B.K. 30868

Polvthrinciella bombacisfolia Bat. & Maia / Bombax insignis (Cav.) Schum. 17336 /

Pterocarpus violaceus Vog. 18655

Polythrium mega (Rehm) Bat. & J.A.Lima / Lafoensia replicata Pohl. 17416

Polytryma myristicacearum Bat. & Cav. | Myristicaceae 27685

Porina sp. | Connaraceae 21325 | Lauraceae 22345 / Myrtus sp. 28694 / Palmae

29109 / Panicum latifolium 801 / Protium sp. 29048 / Sapotaceae 28785 / Indt.

21898 23912 27670 28163 28589 ; P. acerina (A.Zahlbr.) R.Sant. / Hippocrateaceae

21514 ; P. albicera (Kremp.) v. Overeem / Apeiba tibourbon Aubl. 28391 ; P. conica

nt. / Anonna salzmanii DC. 19208 / Couepia bracteosa Benth. 21552 /

Desmoncus sp. 17388 / Eschweilera ovata (Camb.) Mart. 18771 / Guatteria

subsessilis Mart, 27966 / Myrtus sp. 28693 / Panicum latifolium L. 28800 / Platonia

insignis Mart. 19362 / Protium sp. 30892 / Psidium albidum 17625 / Indt. 18687

18931 ; P. cupreola (Müll.Arg.) Schilling / Gustavia angusta L. 18793 / Sterculiaceae

28930 P. cupreola (Müll.Arg.) Schilling v. ciliata Bat. & Tal. / Psychotria sp.

18644 : P. epiphylla (Fée) Fée / Astronium fraxinifolium 19162 / Couepia rufa

Ducke 21644 / Eschweilera sp. 24176 / Myrtaceae 44496 / Oreodoxa oleracea Mart.

16239 | Indt. 27914 28568 29056 ; P. imitatrix Müll.Arg. / Guatteria subsessilis

Mart. 27965 ; P. kamerunensis Schilling / Cocos coronata 30490 / Connaraceae

21321 / Rubiaceae 21993 / Indt. 21337 ; P. minuta Bat., Bez. & Cav. / Indt. 21343;

P. nitidula Müll.Arg. | Bromeliaceae 18692 / Indt. 16264 ; P. obducta (MülLArg.)

Schilling / Guatteria subsessilis Mart. 27971 ; P. octomera (Müll.Arg.) Schilling /

Couepia rufa Ducke 21637 ; P. oemocarpi Bat., Peres & Maia / Indt. 21341 ; E.

phyllogena (Müll.Arg.) MülLArg. / Couepia rufa Ducke 21640 / Indt. 28569 ; P.

platypoda Miill.Arg. / Indt. 28570 ; P. rubentior (Stirt.) Müll.Arg. / Apciba

tibourbon Aubl. 28392 / Cocos coronata 30489 / Guatteria subsessilis Mart. 27970 /

Protium sp. 24118 ; P. rufula (Kremp.) Vain. / Bignoniaceae 24192 / Eschweilera sp.

24177 | Zingiberaceae 30861 ; P. rhaxteri R.Sant. / Cocos coronata 30492 / Protium

sp. 30890 ; Р. verruculosa Müll.Arg. / Bignoniaceae 21668 / Indt. 27913

Poropeltis davillae Henn. v. mediofasciata Bat. & Herrera / Davilla rugosa 27544

Praematospora lecythisii Bat. & H.Lima / Lecythis sp. 2010

Prillieuxina capizensis (Mendoza) Ryan / Palmae 21253

Protostegiomyces lembosiae Bat. & Vital / Loranthus pyrifolius H.B.K. 30869

Psathyromyces sp. | Lauraceae 24048 / Oenocarpus bacaba Mart. 24122 ; P. minutus

Bat. & Peres / Palmae 29129 ; P. rosacearum Bat. & Peres / Palmae 29128 /

Poraqueiba sericea Ful. 30789 / Protium sp. 24119 / Rosaceae 20959

Pseudomeliola rolliniae Rehm | Malpighiaceae 21474

Pseudomicrocera henningsii (Koord.) Petch / Styrax sp. 19100

Puccinia anthephorae (Syd.) Arth. & Fromme / Anthephora hermaphrodita Kuntze

17332; P. heterospora Berk. & Curt. | Sida sp. 17116

Pycnidiopeltis smilacinum Bat. & Costa / Vismia sp. 21525

Pyenociliospora belluciae Bat. £ J.A.Lima / Centella sp. 28544 / Chrysophyllum

cainito L. 17104 ; P. caesalpinifolii Bat. & J.A.Lima / Licaria sp. 28023 ; P.

Source : MNHN, Paris

EXSICCATA FUNGOS DO BRASIL 141

crescentiae Bat. & Talt. / Coumarouna sp. 18876 / Lauraceae 24061 ; P. crescentiae

Bat. & Talt. v. microcarpa Bat. & Talt. / Anonna salzmanii DC. 18941

Pyrenopeziza valerianae Kirschst. | Rourea glabra H.B.K. 20434

Pyriomyces protii Bat. & Maia / Protium sp. 19046

Raciborskiella couepiae Bat. & Bez. | Couepia rufa Ducke 18944 ; R. ingae Bat. &

Bez. / Couepia rufa 18952 / Nectandra sp. 18640 / Tocoyena formosa 19006 ; R.

Janeirensis (Müll.Arg.) R.Sant. / Burseraceae 28144 / Indt. 27666 28165 29083 Fi

prasina (Müll.Arg.) R.Sant. / Asclepia curassavica L. 18897 / Bignoniaceae 21664

Rhagadolibium cucurbitacearum (Rehm) Theiss. / Cucurbita maxima 17477

Rhynchomeliola licaniae Bat. & Bez. / Couepia rufa Ducke 18946 / Rosaceae 23617

Indt. 16183

Rhynchostrigula papillata Bat., Bez. & Cav. | Malpighiaceae 21472

Santessonia epiphylla Bat. & Cay. / Palmae 29120 / Indt. 27659

Sarcinella acalyphae Syd. | Indt. 17565

Schizopeltis ignota Bat. & Cay. / Abuta sp. 30798 ; S. olivacea (Hóhn.) Bat.

Leguminosae 18638

Schizothyrina rubi (Petr.) Bat. & H.Lima / Indt. 29072

Scolecopeltidium djalmae Bat. & Peres | Euphorbiaceae 28489 ; S. eschweilerae Bat.

Indt. 16265 ; S. ingae (Toro) Bat. / Lecythidaceae 21319 ; S. praeclara Bat. &

H.Lima / Indt. 1962 ; S. racemosae Bat. & H.Lima / Indt. 2490 ; S. xylopiae (Bat. $e

Gay.) Bat. / Licania tiriuva Cham. & Schlecht. 18567

Scolecopeltis misanensis Hino & Katumoto / Indt. 29074

Scolecopyenis palmacearum Bat., Bez. £ Cay. / Indt. 21327

Septonema sp. | Byrsonima sericea DC. 11824 ; S. longisporum Bat. | Byrsonima

cydonifolia 13008 / Melastoma sp. 13342 ; S. seccedens Cda | Allophylus edulis

St.Hil. 18407 ; S. smilacinum Speg. / Cyperaceae 17181 / Indt. 15792 ; S.

trichomericola Bat. £ Nasc, / Quercus ruber 27122

Septoriomyces leguminosae Bat. & Cay. | Petrea sp. 38117

Setella citricola Bat. & Peres / Indt. 15793

Setomyces sp. | Indt. 23914 ; S. belluciae Bat. & Peres / Apeiba tibourbon Aubl.

28395 / Eugenia sp. 28373 / Euphorbia papillosa St.Hil. 16105 / Gustavia angusta L.

18790 / Lauraceae 22347 / Mabea sp. 21883 / Myristicaceae 27689 / Palmae 21250

29112 / Passiflora sp. 21508 / Petrea sp. 38115 / Poraqueiba sericea Ful. 30788 /

Tocoyena formosa 19004 / Xylopia sp. 21557; S. crescentiae Bat. de Talt. / Aniba

rosedora Ducke. 28427 / Anonnaceae 21761 28923 / Eugenia sp. 28372 / Guatteria

subsessilis Mart. 27974 / Licaria sp. 28024 / Panicum latifolium L. 28805 / Platonia

insignis Mart. 19364 / Poraqueiba sp. 20682 / Protium sp. 19049 / Indt. 21000 28539

28730 2907 - genipae Bat. & Peres / Cocos coronata 30508 ; S. giganteae Bat. &

Bez. / Apocynaceae 22012 / Gustavia angusta L. 18789 / Lauraceae 21469 /

Lucuma grandiflora A.D.C. 18885 / Nectandra sp. 18641 19001 / Indt. 18930 19016

21332 ; S. minutus Bat. & Maia / Inga sp. 29068 / Myrtaceae 28832 / Palmae 21248

| Zingiberaceae 30859 / Indt. 28572 ; S. orchideae Bat. & Peres / Ampelidaceae

21532 / Bignoniaceae 23951 / Cocos coronata 30506 / Couepia bracteosa Benth.

21549 / Couepia rufa Ducke 18947 / Eschweilera ovata (Camb.) Mart. 18770 /

Euphorbia papillosa St.Hil. 19539 / Garuya pinnata Roxb. 19986 / Lauraceae 24053

| Myristicaceae 27688 / Ocotea sp. 17198 18902 / Oenocarpus bacaba Mart. 24124 /

Palmae 21247 21406 29124 30611 / Petrea sp. 38121 / Poraqueiba sericea Ful. 30787

/ Protium sp. 18782 / Psychotria sp. 18908 / Rosaceae 23612 / Rubiaceae 21839

Source : MNHN, Paris

142 J, MOUCHACCA

21991 / Syzygium jambolanum DC. 18758 / Vismia sp. 21528 / Indt. 19335 21329

27667 28233 28608 29010 29041 30679

Skoteinospora amapensis Bat. de Silva / Myrtus sp. 28688

iniella fimbriata Bat. | Sapotaceae sp. 28782 ; S. gustaviae Bat. & Nasc. /

eae 21662 / Indt. 27677 29037 ; S. lucheafolii Bat. & Cav. / Luchea

paniculata Mart. 20543 ; S. ocoteae Bat. de Peres / Myrtus sp. 28689 / Sterculiaceae

28928 / Indt. 28729 29009 : 5. philodendricola v. macrospora Bat. & Campbell /

Rosaceae 21360 ; 5. picramniae (Bat. & Gay.) Bat, / Myrtus sp. 28690 ; 5.

pogonophoreana Bat. & H.Lima | Bignoniaceae 24187 / Eschweilera sp, 24182 /

Hippocrateaceae 23994 / Luchea paniculata Mart. 20538

Sphaerochaetia sp. | Marantaceae 24223 ; S. splendida Bat. & Cav. / Indt. 21623

Spinomyces genipae Bat. & Peres / Anonnaceae 21765 / Couepia bracteosa Benth.

21548 / Lauraceac 24057 / Licaria sp. 28028 / Ocotea sp. 18903 / Palmae 30610 /

Passiflora sp. 21507 / Vismia s; Zingiberaceae 30860 / Indt. 21490 29080

30677 ; S. giganteae Bat. & Herrera / Eugenia sp. 28375 / Inga sp. 29066 ; S.

ocoteac Bat. € Maia / Bignoniaccac 23953 / Myristicaceae 27691 , Palmae 29125

Sporidesmium melloae Bat. € Garnier / Melloa populifolía Britton 17009

Sporochisma insigne Sacc., Rouss. & Bomm. / Palmae 21251 ; S. mirabile Berk. &

Br. / Emmantum fagifolium Desv. 27926 ; 5. stilboideum Bat., Bez. & Valle /

Lauraceae 24055

Sporocybomyces pulchrum Bat. & Maia / Ocotea sp. 18901 / Protium sp. 19050

Stellopeltis cupaniae Bat. € Maia / Cupania sp. 19311 ; S. philodendricola (Bat.)

Bat, & Vital / Pitcairnia angustifolia 13380 | Vitis sp. 13319; S. vismiae (Bat. & Vi-

tal) Bat, & Vital / Aniba rosedora Ducke 28426

Stereum australe Lloyd | Bois mort 19445

Stigmastoma aquilina Bat. & Maia / Pteridium aquilinum (L.) Kuhn 14336

Stigmatoscolia pini Bat. & Peres | Pinus lambertiana Dougl. 15978

Stigmopeltella amazonensis Bat. | Leguminosae 21423

Stirtonia bahiensis Bat. & Matta / Prunus armeniaca L. 17482

Stomiopeltella machadoi Bat. & H.Lima / Amomis caryophyllata (Jacq.) Krug &

Urban 14101

Stomiopeltis sp. | Zingibera

Cusparia trifoliata Engl.

1e 30864 / Indt. 28578 ; S. allophylli (Hansf.) Bat. /

036 ; 5. aspersa (Berk.) Theiss. / Anacardium occiden-

tale L. 20716 / Flacourtiaceae 24111 ; S. cassiae Mendoza / Protium sp. 27683 ; 5.

citri Bitancourt / Echites cururu Mart. 22077 ; S. minor (Bitancourt) Luttrell /

Lauraceae 24062 / Protium sp. 21602 / Rosaceae 23618 ; S. rubi (Fokl.) Petr. /

Euphorbiaceae 29015 ; S. suttoniae (Mendoza) Luttrell | Swartzia sp. 20692

Strigula sp. | Didÿmopanax morototoni Dechne & Pach. 18847 | Guatteria

Subsessilis Mart. 27973 / Lecythidaceae 21479 / Nectandra sp. 20287 / Protium sp.

20094 / Rosaceae 20967 21358 / Vismia sp. 21523 / Xylopia sp. 18842 21556 / Indt.

21006 21240 28228 28538 28592 ; S. concreta (Fée) R.Sant. / Chrysophyllum cainito

L. 17102 / Cocos coronata 30505 / Platonia insignis Mart. 19359 / Indt. 15993

21491; S. elegans (Fée) Müll.Arg. / Anonnaceae 28924 / Bombax insignis (Cav.)

Schum. 17338 / Couepia bracteosa Benth. 21553 / Euphorbia papillosa St.Hil. 16103

/ Lucuma grandiflora A.D.C. 18886 / Myrt ie 28833 / Nectandra sp. 18766 19002

19012 / Pisonia tomentosa 19091 / Protium sp. 30891 / Psychotria sp. 18909 /

Sterculiaceae 28933 / Syzygium jambolanum DC. 18756 / Terminalia catappa L.

18657 / Indt. 18919 28103 29062 37436 ; S. maculata (Cke & Mass.) R.Sant, /

Sapindaceae 21572 ; S. melanobapha (Kremp.) R.Sant. / Anonna salzmanii DC.

Source : MNHN. Paris

EXSICCATA FUNGOS DO BRASIL 143

19210 / Eschweilera ovata (Camb.) Mart. 18774 / Pogonophora schomburgkiana

Miers ex Benth. 17404 ; S. nemathora Mont. / Astronium fraxinifolium 19164 /

Myrtaceae 28831 / Nectandra sp. 18768 / Protium sp. 24113 30888 / Tocoyena

formosa 19007 / Indt. 23906 ; S. schizospora R.Sant. / Euphorbia papillosa St.Hil.

19540 / Hippocrateaceae 21513 / Poraqueiba sericea Ful. 30792 / Psidium albidum

17627 / Indt. 29079 ; S. subtilissima (Fée) Müll.Arg. / Ocotea sp. 17197 / Protium

sp. 24114 / Indt. 19015

Sydowiellina amazonensis Bat. & Peres / Rosaceae 20964 ; S. lecythicola Bat. &

ma / Lecythis sp. 2013 ; S. /ucheae Bat. & Cav. / Luchea paniculata Mart.

20537 ; S. philodendricis Bat. & H.Lima / Indt. 29075 ; S. rionegrensis Bat. &

Holanda / Leguminosae 21420

Sysphingomyces palmae Bat., Bez. & Cav. / Palmae 21408

Tegaster protiicola Bat. & Maia | Panicum latifolium L. 28798

Tegoa couepiae Bat. & Bez. | Couepia rufa Ducke 21643 ; T. eugeniae Bat. & Maia

Cocos coronata 30496 ; T. mappiae Bat. & Bez. / Protium sp. 18785 / Indt. 21333 ;

T. tabebuiae Bat. & Peres / Bombax insignis (Cav.) Schum. 17337 / Chrysophyllum

cainito L. 17103 / Petrea sp. 38119 / Indt. 21336

Tricharia sp. | Petrea sp. 38114 / Poraqueiba sericea Ful. 30795 / Indt. 21493 ; 7.

carnea (Müll.Arg.) R.Sant. / Cocos coronata 30500 / Protium sp. 30886 ; T. vainoi

R.Sant. / Palmae 44579

Trichobolbus palmae Bat. & Cav. / Palmae 21243

Trichomerium sp. | Indt. 16179 16184 : T. abhorrentes Bat. | Aniba rosedora Ducke

28429 | Quercus ruber 27121 ; T. coffeicolum (Putt.) Speg. v. pentasetosum Bat. |

Eugenia axillaria Willd. 13479 ; T. criniporum Bat. & Cif. / Artocarpus incisus L.

15908 ; T. crotoni Bat. | Byrsonima cydonifolia 13006 ; T. jambosae Bat. & Cif. |

Mimosa caesalpiniifolia Benth. 17013 ; T. ornatum Bat. Nasc. & Cif. / Artocarpus

incisus L. 13413

Trichopeltomyces phillippinensis Bat. & Costa / Couepia bracteosa Benth. 21551

Trichopeltospora sp. | Nectandra sp. 18769 / Ocotea sp. 18905 ; T. pipericola Bat.,

Cif. & Costa / Anonna salzmanii DC. 19209 / Desmoncus sp. 17391 / Gustavia

angusta L. 18794 / Psidium albidum 17628 / Psychotria sp. 18907 / Indt. 18929 ; 7.

pipericola Bat., Cif. & Costa v. elongata Bat., Cif. & Costa / Couepia rufa Ducke

18949 / Hymenaea sp. 18668 / Pogonophora schomburgkiana Miers ex Benth. 17407

Trichopeltum pulchellum Speg. | Jambosa vulgaris DC. 20674 / Оспосагриз bacaba

Mart. 24121

Trichosia pernambucensis Bat. & Garnier / Indt. 19334

Trichothelium sp. | Hippocrateaceae 21519 / Palmae 29110 } Protium sp. 29047

Indt, 28575 28586 29082 ; T. amazonensis Bat., Bez. & Cav. / Indt. 21339 ; T.

annulatum (Karst.) R.Sant. / Cocos coronata 30495 ; T. brasiliensis Bat., Bez. &

Xavier / Cocos coronata 30493 ; T. epiphyllum Müll.Arg. / Desmoncus sp. 17389

Guatteria subsessilis Mart. 27968 ; T. epiphyllum Müll.Arg. v. ciliata Bat. & Bez. |

Gustavia angusta L. 18788 ; T. minus Vain. / Panicum latifolium L. 28802

num fructigenum (Rab. ex Sacc. & Trotter) S.Hughes / Melastoma sp.

41 / Zantedeschia aethiopica 11818 / Indt. 15791 ; T. pes-gallinae Cif., Bat. &

V. jumbosae Bat. / Jambosa malaccensis 11419 ; T. roupalae (Syd.) S. Hughes

/ Quercus ruber 27116

Triposporium elegans Cda | Zantedeschia aethiopica 11817.

Truncatella truncata (Lév.) Steyaert / Bertholletia excelsa Berg. 20664

Uleomyces sanguineus (Speg.) Syd. | Styrax sp. 19099

Tripospe

133

Source : MNHN. Paris

144 J. MOUCHACCA

Uredo lucumae Arth. & Johnson | Lucuma sp. 27746

Uromyces manihoticla P.Henn. / Manihot utilissima Pohl. 17200

Vanudenia nectandreae Bat. & Maia / Nectandra sp. 20286

Venturia minutissima Bat. & Peres | Didymopanax morototoni Dechne & Pach.

18851

Vestergrenia chaenostoma (Sacc.) Theiss. / Nectandra sp. 21215

Vitalia mangiferae Bat. & H.Lima / Mangifera indica L. 2342

Vizella sp. | Licaria sp. 28033 / Indt. 21900 28566 ; V. appendiculata (Mont. &

Berk.) Theiss. / Centella sp. 28546 / Euphorbia papillosa St.Hil. 19538 /

Melastomataceae 20706 ; V. bingervilleana C. & M.Moreau / Brosimum sp. 21871 /

Inga sp. 23687 / Indt. 28053 ; V. crescentiae Bat. & Bez. / Mimosa caesalpiniifolia

Benth. 17012 / Indt. 16178 ; V. gomphispora (Berk. & Br.) S. Hughes / Aniba

rosedora Ducke. 28424 / Couepia rufa Ducke 18948 / Nectandra sp. 19000 / Indt.

27919 ; V. gustaviae Bat. & H.Lima / Coumarouna sp. 18874 ; V. splendida Bat. &

Bez. / Indt. 16175

Xylosphaera cornu-damae (Schwein.) Dennis / Talauma ovata 19020

ianthino-velutina (Mont.) Dennis / Inga sessilis 19022 ; X. mellisii (Bei

Indt. 21395

Xystozukalia transiens (Hóhn.) Theiss. / Apocynaceae 30641

.) Dennis /

Ascolichen | Brosimum discolor 18798

Asterinaceae | Euphorbiaceae 28490 / Melastomataceae 44505 / Myrtaceae 28837 /

Rosaceae 20965 / Indt. 25172

Capnodiaceae | Cupania sp. 19312

Chaetothyriaceae | Davilla rugosa 27545

Discolichen | Rosaceae 20966

Discomycéte | Chrysophyllum cainito L. 17105

Meliolaceae | Burseraceae 27863 / Garuga pinnata Roxb. 19984 / Tabebuia caraiba

(Mart.) Bureau 18870 / Indt. 13172 15603 21330 28055

Micropeltaceae | Brosimum sp. 21874 / Hippocrateaceae 24000 / Indt. 23908 25173

28101

Microthyriaceae | Clusia insignis Mart. 21486 / Palmae 29111

Plenotrichaceae | Aniba rosedora Ducke. 28425 / Lauraceae 22342 / Indt. 23610

28100

Polystomelaceae | Indt. 27911

Sphaeropsidaceae | Rubiaceae 21293

Stigmataceae | Licaria sp. 28034

Stilbaceae | Pera sp. 21419

Strigulaceae | Indt. 21901

Trentepholiaceae | Anonna salzmanii DC. 18942 / Lafoensia replicata Pohl. 17414

Trichopeltulaceae | Indt. 21001

Tuberculariaceae | Apocynaceae 30640 / Paullinia cupana H.B.K. 29087

Source : MNHN Paris

Cryptogamie, Mycol. 1990, 11 (2): 145-152 145

TUDIOS MICOLOGICOS EN EL PARQUE NATURAL DE

MONFRAGUE (EXTREMADURA, ESPANA).IL.

APHYLLOPHORALES

J.L. MANJON, M.N. BLANCO y G. MORENO

Dpto de Biología Vegetal (Botánica).

Univ. de Alcalá de Henares, Madrid, Spain.

RESUMEN - Se describen tres especies que fructífican en el Parque Natural de

Monfragüe (Cáceres) nuevas para el catálogo micológico espanol: Acanthophysium

apricans (H. Bourdot) G. Cunn., Antrodia albidoides David & Dequatre y Phlebia

subochracea (Bres.) John Eriksson y Ryvarden. Aportándose las fotografías de los

carácteres microscópicos más importantes.

RÉSUMÉ - Nous décrivons trois espèces récoltées dans le Parc Naturel de

Monfragüe (Cáceres), nouvelles pour la mycoflore de l'Espagne: Acanthophysium

apricans (H. Bourdot) G. Cunn., Antrodia albidoides David & Dequatre et Phlebia

subochracea (Bres.) John Eriksson & Ryvarden. Les microphotographies des

actéristiques les plus importantes sont présentées.

ABSTRACT - We described three specimens collected in Monfragúe Natural Park

(Caceres), Acanthophysium apricans (H. Bourdot) G. Cunn., Antrodia albidoides Da-

vid & Dequatre and Phlebia subochracea (Bres.) John Eriksson & Ryvarden. These

species are reported for the first time from Spain and we have also included the main

microscopical data.

MOTS CLES : Aphyllophorales, Acanthophysium apricans, Antrodia albidoides,

Phlebia subochracea, Espagne, taxonomic.

TRODUCCIÓN

El Parque Natural de Monfragüe se encuentra localizado en la

provincia de Cáceres y es un enclave de flora mediterránea europea de gran

importancia biológica. Los estudios que aquí presentamos en el orden

Aphyllophorales son complementarios a los realizados por Manjón et al.

(1989) y Blanco et al. (1989). En otras categorías taxonómicas (Órdenes o

clases), han sido publicados resultados parciales, como por ejemplo en el

Source : MNHN Paris

146 J.L MANJON, M.N. BLANCO y G. MORENO

Fig. 1-9. Acanthophysium apricans (H. Bourdot) G. Cunn. 1-4: elementos

himeniales. 5-7: acantofisis. 8-9: esporas.

Source : MNHN. Paris

APHYLLOPHORALES EN EL PARQUE DE MONFRAGÜE 147

orden Agaricales s. lato por Moreno & Esteve-Raventos (1988) y Moreno et

al. (1990a), y en la clase Myxomycetes por Moreno et al. (1990b).

En esta aportación, queremos hacer especial referencia a especies,

recientemente descritas para la ciencia de posible dispersión mediterránea y

huevas para el catálogo micológico español.

MATERIAL Y METODO

El material objeto de estudio se encuentra depositado en el

departamento de Biología Vegetal (Botánica) de la Universidad de Alcalá de

Henares.

Las microfotografías se han realizado en un microscopio Nikon

Optiphot, con sistema automático de fotografía y contraste de fases. Las

preparaciones han sido observadas en hidróxido potásico al 5% o rojo

congo amoniacal. La tinción de núcleos de las esporas de Antrodia albidoides

se ha realizado siguiendo la técnica de Giemsa en material de herbario y

eliminando las gotas lipidicas esporales, según el método utilizado en el

laboratorio de Micologia de la Universidad Claude Bernard, Lyon 1,

Francia.

CATÁLOGO DE ESPECIES

Acanthophysium apricans (H. Bourdot) G. Cunn., emend. Boidin, Lanque-

tin, Gilles, Candoussau & Hugueney, Bull. Soc. Mycol. France 101: 339

(1985).

Aleurodiscus apricans H. Bourdot, Rev. Sci. Bourbonnais 27: 5 (1910).

En leño de Rubus sp., Puente arroyo del Barbaón, 15.11.87, HAH 9996 y

En Viburnum tinus, umbria Castillo de Monfragüe, 14.X1.86, HAH 11282.

1128

Cuerpo fructifero resupinado, crustáceo, de color marrón claro.

Sistema de hifas monomítico, de 2-4um de diámetro y sin fibulas.

Acantófisis muy numerosas, de pared más o menos engrosada y morfologiá

hifoide en la parte basal, además presenta a modo de basidiolos con

evaginaciones filiformes y con digitaciones. Gleocistidios de forma variable,

de gruesa pared y con reacción positiva con la sulfovainillina. Basidios

tetraspóricos, de 40-65 x 12-I5pm, cilindricos o con una constricción en el

centro. Esporas ovoides, de 17-21 x 8-10um, lisas, amiloides, con la cara

adaxial plana y el apéndice hilar muy patente. Figs. 1-9.

Pilát (1926), crea el subgénero Acanthophysium dentro del género

Aleurodiscus; Cunningham (1963), lo eleva a la categoría de género, tomando

como especie tipo, 4. apricans. Estos autores junto con Bourdot & Galzin

(1928), interpretan mal esta especie al describirla con las esporas

ornamentadas, por eso Boidin et al. (1985) enmiendan el género

Source : MNHN, Paris

148

J.L MANJON, M.N. BLANCO y G. MORENO

Fig. 10-12. Antrodia albidoides David & Dequatre, cuerpos fructíferos.

Source : MNHN, Paris

APHYLLOPHORALES EN EL PARQUE DE MONFRAGÜE 149

Fig. 13-22, Antrodia albidoides David € Dequatre. 13-14: himenio y subhimenio. 15:

basidio. 16-19: elementos estériles. 20: hifas esqueléticas. “21: esporas. 22:

esporas uninucleadas.

Source : MNHN, Paris

150 J.L MANJON, M.N. BLANCO y G. MORENO

Acanthophysium en base a A. apricans, para aquellos táxones con

gleocistidios SV (+), con acantófisis frecuentes, con fibulas o sin asas de

anastomosis y esporas amiloides de pared lisa.

rbustos

05.

Esta especie fructifica principalmente sobre diversos

pertenecientes a los géneros Rosa, Calluna, etc., e incluso en pterid

Por último, se indica que para facilitar la esporulación del material se

ha mantenido durante una semana en camara húmeda.

Antrodia albidoides David & Dequatre, Mycol. Helvet. 1: 359 (1985).

En leño de Viburnum tinus, umbria castillo de Monfragüe, 14.XI.86, НАН

11686, 11687, 11688, 11690. Ibidem, en leño de Arbutus unedo, HAH 9998. Ibidem,

13,111.87, HAH 11689,

Cuerpo fructífero resupinado, creciendo en pequeñas placas orbiculares.

Poros angulares de 2-3mm, pero a menudo transformados formando una

estructura casi lamelal. Sistema de hifas dimitico. Hifas generativas

fibuladas, de pared delgada o a veces algo engrosada. Hifas esqueléticas de

pared engrosada, de 2,5-4, 54m de diámetro, sinuosas tanto en la trama

como en el contexto y en algunas ocasiones ramificándose dicotómicamente.

Basidios claviformes, tetraspóricos, de 30-45 х 5-8um, en el himenio

aparecen abundantes elementos estériles, procedentes de terminaciones de

hifas generativas y de hifas esqueléticas con el lumen ensanchado. Esporas

cilindricas, 11-14 x 3,5-$,5um, hialinas, no amiloides y uninucleadas. Figs.

10-22.

La ultraespecie Antrodia albidoides ha sido creada por David &

Dequatre (1985) y agrupa a dos especies diferentes A. albidoides s. stricto

(especie homotálica) y A. subalbidoides (especie heterotálica), ambas son

iguales macro y microscópicamente, y su diferenciación tan sólo es genética.

Antrodia albida se diferencia sólo microscópicamente, siendo igual la

morfología de su cuerpo fructífero a la ultraespecie 4. albidoides. Antrodia

albida presenta esporas binucleadas, menos alargadas y sus hifas esqueléticas

son menos contorneadas que en A. albidoides, caracteres ya indicados por

David & Dequatre (1985) y observados en nuestro material.

Antrodia albidoides ha sido citada recientemente de Italia (Cerdeña) so-

bre Erica arborea (Bernicchia, 1988).

Phlebia subochracea (Bres.) John Eriksson & Ryvarden, Cort. N. Europ. 4:

873 (1976).

= Grandinia subochracea Bres., Hedwigia 33: 206 (1894).

En el leho de ramas muertas de Quercus ilex ssp. rotundifolia, cortijo de las

Corchuelas del Notario, 26.X.86, HAH 11314. En restos leñosos de Cistus ladanifer,

finca de las Cansinas, 9.X1.87, HAH 11313.

Source : MNHN, Paris

APHYLLOPHORALES EN EL PARQUE DE MONFRAGÜE 151

Fig. 23-30. Phlebia subochracea (Bres.) John Eriksson & Ryvarden. 23-25: cistidios.

26-30: esporas.

Cuerpo fructífero resupinado, ceráceo, con la superficie himenial

grandinoide de color marrén-ocraceo. Sistema de hifas monomitico, hifas

generativas de 2,5-5um de diámetro de paredes delgadas y con fibulas en

todos los septos. Cistidios subulados de 50-70 x 5-7um y de paredes finas.

Basidios tetraspôricos de 30-40 x 5-6um. Esporas elipsoidales, de 6-8 x

2,5-3,5um, hialinas y no amiloides. Fig. 23-30.

Una especie próxima y difícil de diferenciar es Phlebia ochraceofulva (H.

Bourdot & Galz.) Donk. Phlebia subochracea destaca por la textura más

laxa, el color más oscuro del cuerpo fructífero y el himenio más o menos

tuberculado. Por ello, Eriksson et al. (1981) dicen que debido a la existencia

de material intermedio sería necesario hacer test de interfertilidad.

Taxon citado por primera vez para Africa del Norte en Marruecos por

Malencon (1985).

Source : MNHN, Paris

152 J.L MANJON, M.N. BLANCO y G. MORENO

AGRADECIMIENTOS

A la casa Nikon (Rego & Cia, Madrid) por su asesoramiento fotografico y

especialmente al Ministerio de Educación y Ciencia por la concesión del Proyecto de

Investigaciôn n° PA 86-0063.

BIBLIOGRAFÍA

BERNICCHIA A., 1988 - Introduzione alla conoscenza delle Aphyllophorales della

Sardegna. Boll. Gruppo Micol. G. Bresadola 31: 176-194.

BLANCO M.N., HJORTSTAM K., MANJON J.L. y MORENO G., 1989 -

Estudios micológicos en el Parque Natural de Monfragüe (Extremadura,

España) II. Aphyllophorales. Cryptogamie, Mycol. 10: 217-225.

BOIDIN J., LANQUETIN P., GILLES G., CANDOUSSAU F. et HUGUENEY

R., 1985 - Contribution à la connaissance des Aleurodiscoideae a spores

amyloides (Basidiomycotina, Corticiaceae). Bull. Soc. Mycol. France 101:

333-367.

BOURDOT H. et GALZIN A., 1928 - Hyménomycétes de France. Heterobasi

Homobasidiés Gymnocarpes. Bibliotheca Mycologica 23 (reprint, 1969).

CUNNINGHAM G.H., 1963 - The Thelephoraceae of Australia and New Zealand.

Bull. New Zealand Dept. Sci. Inclust. Res. 145: 359 p.

DAVID A. et DEQUATRE В., 1985 - Antrodia albidoides (Polyporaceae) nouvelle

ultraspecies méridionale. Mycol. Helvet. 1: 357-369.

ERIKSSON J., HIORTSTAM K. and RYVARDEN L., 1981 - The Corticiaceae of

North Europe, Vol. 6. Oslo, Fungiflora: 1049-1276.

MALENCON G., 1985 - І. Corticiacés du Maroc. II. Les Tomentelles. Bull.Soc.

Mycol. France 101: 257-290.

MANJON J.L., BLANCO M.N. y MORENO G., 1989 - Odonticium monfraguense

sp. nov. Corticiaceae. Cryptogamie, Mycol. 10: 135-140.

MORENO G. y ESTEVE-RAVENTOS F., 1988 - Estudios micológicos en el Par-

que Natural de Monfragiie (Extremadura, España). l. Agaricales. Bol. Soc.

Micol. Madrid 12: 67-83.

MORENO G., ESTEVE-RAVENTOS F. y ILLANA C., 1990a - Estudios

micológicos en el Parque Natural de Monfragüe (Extremadura, España). IV.

Agaricales. Bol. Soc. Micol. Madrid 13 (en prensa).

MORENO G., ILLANA C. and HEYKOOP M., 1990b - Contribution to the study

of the Myxomycetes in Spain I. Mycotaxon 37: 1-24.

PILÁT A., 1926 - Monographie der Mitteleuropäischen Aleurodiscincen. Ann.

Mycol. 24: 203-230.

Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1990, 11 (2): 153-156 153

ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

SAMUELS Gary G., 1988 - Fungicolous, Lichenicolous and Myxo-

myceticolous species of Hypocreopsis, Nectriopsis, Nectria, Peristomialis

and Trichonectria. Mem. N.Y. Bot. Gard. 48: 78p.

Revue des Hypocréales fongicoles a périthéces jaunes ou oranges, princi-

palement sur Ascomycetes mais aussi, en moindre nombre, sur lichens et

myxomycètes.

60 espèces de Hypocreopsis, Nectria, Nectriopsis, Peristomialis et Trichonectria

sont discutées. Les genres Nectriopsis et Peristomialis sont réhabilités tandis que

Bionectria est mis en synonymie avec Nectria. Une nouvelle espéce d'Hypocreopsis:

H. xylariicola est décrite. Quatre espèces, dont une nouvelle (N. brunneostriata) sont

incluses dans les Nectria. Le genre Nectriopsis est revu pour ÿ inclure les espèces à

périthèces blanes à jaune pâle, à paroi périthéciale d'épaisseur inférieure à 20µπι,

ascospores bicellulaires et généralement fongicoles. Ainsi, 27 nouvelles combinaisons

et 18 nouvelles espèces sont proposées dans le genre. On trouve enfin une clef des

Hypocréales à espèces fongicoles, lichénicoles où myxomycéticoles ainsi qu’une clef

des genres étudiés et une clef synoptique basée sur les caractères des périthèces et

ceux des substrats. Des descriptions, synonymies et dessins sont donnés pour toutes

les espèces.

Selected Mycological Papers of Dr Tsuguo HONGO, 1989 - Reprinted by

Shiga Univ., Fac. of Education, Lab. of Biology, Japon, 362p.

A l'occasion du départ en retraite du Professeur Tsuguo Hongo, cet ouvrage re-

groupe ses principaux articles dont certains premiers travaux difficiles à se procurer

aujourd'hui:

“Notulae Mycologicae”, 18 articles publiés entre 1962 et 1983; “The Agaricales of

Japan”, 4 articles publiés en 1959 et 1960; "Mycological Reports” from New Guinea

and Solomon Islands, 5 articles publiés entre 1973 et 1976; “Higher Fungi of the

Bonin Islands", 3 articles publiés entre 1977 et 1980; "Materials for the Fungus Flora

of Japan”, 12 articles publiés entre 1966 et 1984; plus 3 articles parus en 1974, 1978

et 1979.

L'ouvrage se termine par la liste compléte des publications de cet éminent

mycologue.

SAMUELS Gary G., 1989 - Mycological Contributions Celebrating the 70th

birthday of Clark T. ROGERSON. Mem. N.Y. Bot. Gard. 49: 375p.

Outre les témoignanes d'admiration et de reconnaissance à l'éminent

mycologue qu'est C.T. Rogerson, ce volume des mémoires du N.Y. Botanical

Garden comporte 44 articles touchant des sujets trés divers selon les spécialités des

auteurs. Ils sont classés en 7 rubriques: Morphologie, Anatomie et Cytologie des

champignons (7 articles); Zoopathologie et Phytopathologie (2 articles); Floristique

subdivisée en. Champignons Imparfaits et Ascomycétes (5 articles), Ascomycétes et

Basidiomycétes (1 article), Basidiomycétes (9 articles); Monographies des Champi-

gnons Imparfaits et Ascomycetes (18 articles) et Basidiomycetes (3 articles). On y

trouve 43 espéces, 37 combinaisons, 8 genres et 4 variétés nouvelles appartenant à di-

verses familles.

Source : MNHN. Paris

154 ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

BETINA V., 1989 - Mycotoxins. Chemical, biological and environmental as-

pects. Bioactive molecules, vol. 9. Amsterdam, Oxford, New York,

Tokyo, Elsevier, 438p.

Enseignant depuis plus de 30 ans la biochimie microbienne à l'Université de

Bratislava (Thécoslovaquie), Vladimir Betina a réalisé une véritable gageure en

écrivant seul cette énorme mise au point dans un domaine en constante évolution.

Un bref chapitre introductif concerne les champignons producteurs de

mycotoxines qui appartiennent surtout aux genres Aspergillus, Penicillium et

Fusarium.

Les mycotoxines sont qualifiées de métabolites secondaires et les diverses voies

de leur biosynthèse sont examinées. Leurs effets biologiques et leurs modes d'action

sont exposés; un chapitre particulièrement intéressant tente d'établir les liens entre la

structure chimique et l'activité des diverses molécules. La partie générale de l'ouvrage

s'achéve par des considérations sur les divers produits dans lesquels on détecte des

moisissures toxinogenes.

Les chapitres 7 à 18 de ce livre constituent une série de monographies sur les

principales mycotoxines. Sont ainsi successivement examinées: aflatoxines,

stérigmatocystines et versicolorines - ochratoxines et dihydroisocoumarines dérivées -

citrinine - trichothécènes - patuline et lactones simples - zéaralènone et dérivés

cytochalasanes - rubratoxines - anthraquinones - mycotoxines trémorgéniques -

épipolythiopiperazine- 3,6-diones - mycotoxines diverses. De nombreux tableaux, des

formules chimiques détaillées et une abondante bibliographie interviennent dans cha-

que chapitre.

Dans cet ouvrage, l'accent a incontestablement été mis sur les problèmes rele-

vant de la chimie, spécialité de son auteur. Les mycologues regretteront peut-étre de

ne pas trouver de développement suffisant pour la partie les concernant, mais le titre

même de ce travail est significatif et le lecteur ne peut être déçu par la somme de

renseignements ainsi réunis.

C. Moreau

ELLIS M.B. and ELLIS J.P. 1988 - Microfungi on miscellaneous. substrates.

m identification handbook. Croom Helm, London and Sydney, and

imber Press, Portland, Oregon, 244p., 56 planches au trait.

Cet ouvrage, qui constitue la suite des "Microfungi on land plants" publié par

les mémes auteurs en 1985, présente sous forme de clés et de descriptions les princi-

paux champignons associés à divers types de substrats, autres que des phanérogames

ou des cryptogames vasculaires vivantes ou mortes: champignons qui se développent

sur, ou avec, des bryophytes, sur d'autres champignons, sur des myxomycètes, sur les

"sols brülés" et les "charbonniéres", sur le sol, sur les excréments d'animaux et sur des

déchets, animaux ou manufacturés. La bibliographie est réduite à quelques manuels.

généraux aisément disponibles en librairie, auxquels les auteurs renvoient le lecteur

désireux de se référer à des publications plus spécialisées. L'ensemble se termine par

un glossaire, les 56 planches figurant 557 espèces, enfin un index des genres et des

espèces traités dans cet ouvrage.

Quelque peu étonnante, en première lecture, est la disparité des traitements ex-

trémes réservés respectivement aux Discomycétes, présentés de manière assez exhaus-

tive jusqu'à des espéces terrestres, certes, mais à habitats relativement souples et aux

fructifications aussi volumineuses que celles du Disciotis venosa (p. 68) ou de la

Source : MNHN. Paris

ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES 155

Morchella esculenta (p. 83), et aux Basidiomycètes dont sont exclues de très nom-

breuses espèces de tailles beaucoup plus modestes et aux habitats bien typé: petits

coprins coprophiles, par exemple, ou encore le Nyctalis lycoperdoides, strictement

fongicole mais qu'on ne trouve qu'aux p. 29 et 45 en tant que substrat du

Pyxidiophora asterophora. En réalité, le terme de “microfungi” qui apparait dans le

titre de l'ouvrage ne doit pas étre interprété comme l'équivalent de “micromycétes”,

opposé à "macromycétes”, mais comme recouvrant assez improprement l'ensemble

des Ascomycétes, Adélomycètes et Zygomycètes (dénommés ici Phycomycètes), et d'à

peine une dizaine de Basidiomycetes.

Dans ce cadre ainsi précisé, c'est un livre destiné à l'usage courant, que les au-

leurs ont voulu mettre à la disposition non seulement des mycologues, mais aussi des

utilisateurs de la mycologie et des amateurs: d'où la présentation d'index des

plantes-hôtes pour les champignons associés aux bryophytes (p. 14-15) ou à d'autres

champignons (p. 42-47), d'une bibliographie succincte et, au contraire, d'un glossaire

assez exhaustif qui explicite les significations de quelques 242 termes du langage pro-

pre aux mycologues systématiciens. Cet effort didactique est surtout à la base du

découpage de la flore mycologique générale en fonction de substrats bien déterminés,

ce qui permet à l'utilisateur de n'avoir à comparer, dans chaque cas particulier.

qu'un nombre relativement restreint d'espèces au lieu d'errer, au risque de s'égarer,

dans l'immensité aride des traités de systématique. Bien sûr, un tel découpage ne

peut être appliqué rigoureusement et uniformément à tous les éléments de la flore

mycologique, mais les auteurs ont surmonté facilement cet écueil en faisant les ren-

vois nécessaires chaque fois que les spécificité s’assouplissent (Crenomyces serratus, p.

126 et 163, Doratomyces microsporus et D. stemonitis, p. 145 et 168 ou Onygena

corvina, p. 131 et 165, par exemple, pour les espèces venant sur excréments ou sur

déchets animaux, plumes en particulier), ou dans des situations plus subtiles comme

les associations carbonicoles de bryophytes et de Discomycètes (Lamprospora, p. 4 et

53, Trichophaea hemisphaerioides, p. 10 et 57). Assez curieusement, toutefois, le ren-

Yoi est exceptionnellement peu explicite (p. 40: "other genera”) á propos de certaines

Mucorales facultativement (Rhopalomyces magnus) ou obligatoirement fongicoles

(Piptocephalis, Syncephalis), qui ne figurent en clair que parmi les champignons

coprophiles (p. 156-158).

L'ouvrage est d’un maniement aisé, pour peu que l'on ait seulement quelques

notions élémentaires de Mycologie: les flores propres à chaque type de milieu décrit.

Sont d'abord découpées en fonction des grands groupes systématiques (Discomycètes,

“autres Ascomycètes", Hyphomycétes, éventuellement Coelomycétes et, enfin,

Myxomycétes, “Phycomycétes” et/ou Basidiomycétes s'il y a lieu. Chaque groupe

systématique est à son tour subdivisé par une clé des genres représentés, suivie des

descriptions des genres et des espèces (par ordre alphabétique et avec clés des espèces

pour les genres qui en comptent plus d'une sur ce milieu précis). Les clés, volontai-

rement simples, sont d'un emploi facile ct les descriptions précises et trés claires (des-

Sins compris), permettent des déterminations fiables, méme par des utilisateurs qui

ne sont pas des mycologues expérimentés. C'est un ouvrage indispensable, non seu-

lement à tous ceux qui s'intéressent aux champignons, qu'ils soient mycologues ou

naturalistes, mais aussi à ceux qui souhaitent pouvoir enfin les prendre réellement en

compte dans leurs analyses d'associations où de biotopes, qu'ils soient floristes ou

écologistes.

P. Joly

Source : MNHN. Paris

156 ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

MOSER M. & JULICH W., unter Mitarbeit von FURRER-ZIOGAS C.,

1988 et 1989 - Farbatlas der Basidiomyceten. Colour Atlas of

Basidiomycetes, 6 et 7. Stuttgart, Gustav Fischer Verlag, respec-

tivement 12p., 79 pl. phot. col. et 16p., 84 pl. phot. col.

La parution des sixième et septième livraisons marque l'achèvement, dans les

délais prévus, de l'important Atlas photographique des Basidiomycètes déjà présenté

parmi les analyses bibliographiques de Cryptogamie-Mycologie en 1986, 1988 et

1989. Tous les documents informatifs comme l'introduction ou l'explication des si-

gles, ainsi que les index généraux, accompagnent donc les diagnoses des genres et

l'iconographie des espèces qui constituent la dernière partie de la publication. Evi-

demment, l'ensemble offre une présentation homogéne et pourra étre classé selon la

numérotation indiquée sur chaque feuillet perforé.

Rappelons que les genres sont décrits en allemand, plus succinctement en an-

glais, français et italien, sur des fiches séparées où se trouvent également mentionnées

leur synonymie et les principales références les concernant dans la littérature

mycologique. Pour terminer ont été étudiés Strobilomyces et — Phylloporus,

Camarophyllus et Hygrocybe, Panaeolus, Stropharia, Gymnopilus et Flammulina. 11

est à remarquer que leurs diagnoses n'ont pas eu la chance de bénéficier d'une aussi

bonne traduction française que celles des Corticiacées Bulbillomyces, Meruliopsis et

Mycoacia. Les planches de photographies en couleurs se rapportent à diverses

espèces qui n'avaient pas figuré dans les précédentes livraisons et qui appartiennent

bien entendu aux grands groupes considérés dans l'ouvrage: Aphyllophorales sensu

lato, Agaricales, Russulales, Boletales, Gastéromycétes. La reproduction photogra-

phique apparait souvent excellente et plusieurs illustrations montrant des champi-

gnons dans leur cadre naturel sont méme particuliérement bien réus:

Les Auteurs souhaitaient proposer aux utilisateurs de leurs Flores un

complément iconographique apportant notamment une image en couleurs des

basidiocarpes d'espéces non représentées jusque là: avec cet Atlas de grande quali

leur but a été pleinement atteint.

J, Perreau

Commission paritaire пе 58611

Dépôt légal n° 15099 - Imprimerie de Montligeon

Sortie des presses le 20 juin 1990

, Imprimé en France

Éditeur : A.D.A.C. (Association des Amis des Cryptogames)

Président : A. Couté; Secrétaire : D. Lamy

Trésorier : R. Baudoin; Directeur de la publication : H. Causse

Source : MNHN, Paris

CRYPTOGAMIE — MYCOLOGIE

BUREAU DE RÉDACTION

MM. DURRIEU G., pour les articles traitant d'Écologie et de Phytopathologie

Laboratoire de Botanique, Faculté des Sciences,

Allées Jules Guesde, 31 000 Toulouse (France).

JOLY P., pour les articles traitant de Systématique

Laboratoire de Cryptogamie, Muséum National d'Histoire Naturelle

12, rue de Buffon, 75005 Paris (France).

MANACHERE G., pour les articles traitant de Physiologie

Laboratoire de Mycologie, Université de Lyon I,

43, Bd du 11 Novembre 1918, 69622 Villeurbanne Cedex (France).

Mmes ZICKLER D., pour les articles traitant de Cytologie

Laboratoire de Génétique, Université de Paris Sud,

Bât. 400, Centre d'Orsay, 91405 Orsay (France).

ROQUEBERT M.F., s'occupera des autres spécialités.

Laboratoire de Cry ptogamie, Muséum National d'Histoire Naturelle

12, rue Buffon, 75005 Paris (France).

COMITÉ DE LECTURE

BOIDIN J., Lyon (France) MONTANT Ch., Toulouse (France)

CHEVAUGEON J., Orsay (France) MOREAU Cl., Brest (France)

GAMS W., Baarn (Hollande) PEGLER D.N., Kew (Grande-Bretagne)

HENNEBERT G., Louvain-la-Neuve SUTTON B., Kew (Grande-Bretagne)

(Belgique) TURIAN G., Genève (Suisse)

LACOSTE L., Paris (France)

Les manuscrits doivent être adressés (en 2 exemplaires) directement à

un membre du Bureau de Rédaction, choisi pour sa spécialité. Le Bureau

peut demander l'avis d'un lecteur choisi pour sa spécialité, méme s'il n'ap-

partient pas au Comité de lecture.

Bien qu'étant avant tout une revue de langue frangaise, les articles

rédigés en Anglais, Allemand et Espagnol sont acceptés.

Les recommandations aux auteurs sont publiées dans le ler fascicule de

Chaque tome.

Source : MNHN, Paris

16 JUIL. 1990

ABONNEMENTS A CRYPTOGAMIF

Tome 11, 1990

CRYPTOGAMIE comprénd trois Sections:

Algologie, Bryologie-Lichénoldgie, Муга сіе

Abonnement à Гиле ду вице Section pour 1990:

France (326 F-hi) 13253 Y ne

Etranger 357/00, F

Abonnement aux 3 Sectións pour 1990:

France (9]8 Fh. 93738 F uc

Étranger с F

Les anciens tomes et lascicüles séparés de Y RhVLE DE MYCOLOGIE ct de

CRYPTOGAMIE.MYCOLOGIE sont toujours disponibles

MEMDIRES HORS SERIF

NO 2 (1942). Les matiéres colorantes des champignons, par L

Pastac. 88 pages : 15 F.

NO 3 (1943). Les constituants de la membrane chez les champ

gnons, par R. Ulrich. 44 pages : 15 F.

ΝΟ 6 (1958).. Essai biotaxonomique sur les Hydnés résupinés el les

Corticiés, par J. Boidin. 390 pages, pl. et fig: + 120 Fi

МО? (1959). Les champignons et nous (Chroniques) (11). par G

Becker. 94 pages: 25 F,

NO 8 (1966). Catalogue de la Mycothéque de E Oe

mie du Muséum National d'Histoire Naturelle (1) y

cétes. Macromycétes {première partie), 68 pages : 25 FF.

NO 9 (1967). Table des Matières (1936-1965). 85 pages : 20 F —

(1966-1975) 30 pages : 10 F.

FLORE MYCOLOGIQUE DE MADAGASCAR ET DEPENDANCES

publiée sous là direction de M! Koger HEIM

Tome 1. Les Lactario-Russulés, par Roger Helm 11938) (épuisé!

Tome 11. Les Rhodophylles, par Henri Romagnesi (1941) 164 pages.

46 fig : 90 F

Tome Ill. Les Mycénes, par Georges Métrod (1949). 144 pages,

88 fig. : 90 F. 5 m

Tome IV, Les Discomycétes de ντ « par Marcelle Le Gal

(1953). 465 pages. 172 fig. : 150 F,

Tome V. Les Urédinées, par Gilbert Bouriquet et J.P, Bassimo.

(1965). 180 pages, 97 fig., 4 pl. hors-texte : 90 F.

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