SOMMAIRE

A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT -

L'ascocarpe du Tuber melanosporum Vitt. (Truffe noire du Périgord,

Discomycétes): structure de la glébe. II. Les veines stériles. .

P. TORRES y M. HONRUBIA - Dinamica de crecimiento y

caracterizacion de algunos hongos ectomicorricicos en cultivo ......... 183

G. MORENO, R. PÓDER, C. ILLANA and F. ESTEVE-

RAVENTÓS - Some interesting agarics and a rare species of

Scleroderma presented at the II and III mycological stages of

165

Esplugas de Llobregat (Barcelona, Cataluna) 193

S.K.M. HASSAN - Chytrids in Egypt: I - saprophytic species of the

Cladochytriaceae from water streams . xan 2м

S.K.M. HASSAN - Chytrids in Egypt: II - New records of species of

Entophlyctidaceae .. 227

Analyses bibliographiques 241

CONTENTS

A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT -

The ascocarp of Tuber melanosporum Vitt. (Black Perigord Truffle,

Discomycetes): structure of gleba. II. Sterile veins (In French) ........ 165

P. TORRES y M. HONRUBIA - Growth dynamism and

characterization of some ectomycorrhizal fungi in culture (in

Spanish) . ss

G. MORENO, R. PODER, C. ILLANA and F. ESTEVE-

RAVENTOS - Some interesting agarics and a rare species of

Scleroderma presented at the I and III mycological stages of

Esplugas de Llobregat (Barcelona, Cataluña) ..... OS:

S.K.M. HASSAN - Chytrids in Egypt: I - Saprophytic species of the

Cladochytriaceae from water streams . 211

S.K.M. HASSAN - Chytrids in Egypt: II - New records of species of

Entophlyctidaceae 227

Bibliography 241

Source : MNHN. Paris

CRYPTOGAMIE

MYCOLOGIE

TOME 12 Fascicule3 1991

Ancienne Revue de Mycologie. Dirigée par Roger HEIM

P DIRECTEUR SCIENTIFIQUE : Madame J. NICOT

SECRÉTAIRE DE RÉDACTION : Mme M.-C. BOISSELIER. ÉDITEUR : A.D.A.C.

Publié avec le concours du Muséum National d'Histoire Naturelle

CRYPTOGAMIE, MYCOLOGIE est indexé par: Biological Abstracts,

Current Contents, Current Awareness in Biological Sciences.

Publications bibliographiques du CDST (Pascal)

Bibliothéque Centrale Muséum

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VHN Paris

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Cryptogamie, Mycol. 1991, 12 (3): 165-182 165

L'ASCOCARPE DU TUBER MELANOSPORUM VITT.

(TRUFFE NOIRE DU PERIGORD, DISCOMYCETES

STRUCTURE DE LA GLEBE. II. LES VEINES STERILES

A. PARGUEY-LEDUCD, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT)

(1) Laboratoire de Cryptogamie, Université Pierre et

Marie Curie (Paris VI), 7 Quai Saint-Bernard -

75252 Paris Cedex 05.

(2) Laboratoire de Cryptogamie, Université Paul

Sabatier, 118 Route de Narbonne

31602 Toulouse Cedex.

RESUME - Les veines stériles de la glébe du Tuber melanosporum Vitt. dérivent de

la cavité du jeune ascocarpe apothécioide. Elles sont constituées d'une palissade de

paraphyses portée par une sous-palissade et productrice de filaments stériles

anastomosés en réseau. Différent organites propres aux cellules des veines stériles

sont décrits (empilements de saccules, enclaves cytoplasmiques, mitochondries no-

tamment).

ABSTRACT - Sterile veins of gleba derive from the cavity of the young apothecioid

ascocarp. They comprise a palisade of paraphyses supported by an under-palisade

and producing a network of sterile filaments. Various cytological peculiarities of

sterile cells are reported (especially stacked cisternae, cytoplasmic compartments, mi-

tochondria).

MOTS CLÉS : Tuber, ascocarpe, paraphyses, ultrastructure.

Afin de compléter l'étude de la glébe, partie interne de l'ascocarpe du

Tuber melanosporum, contenue à l'intérieur du péridium et composée de vei-

nes fertiles et stériles intriquées, nous présentons nos observations sur les

veines stériles; celles relatives aux veines fertiles ont été rapportées dans une

récente publication (Parguey-Leduc et al, 1990). Nous décrirons succes-

sivement l'origine, l'évolution et la structure des veines stériles et mention-

nerons ensuite leurs caractéristiques cytologiques les plus notables.

Les précisions sur le matériel et les méthodes utilisés ayant été

indiquées dans la premiére partie de ce travail, nous rappellerons seulement

ici que les observations ont été effectuées en microscopie photonique

(écrasements, coupes à la paraffine, coupes semi-fines) et en microscopie

électronique à transmission (aprés double fixation glutaraldéhyde-tétroxyde

d'osmium, inclusion dans la résine de Spurr, contraste par l'acétate

d'uranyle et le citrate de plomb ou technique de Thiéry, 1967).

Source : MNHN, Paris

166 A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT

Fig. 1-3. Origine et évolution des veines stériles. 1: cavité unique, ouverte, au stade

apothécioïde; 2: individualisation des veines stériles; 3: multiplication des veines

stériles. Echelle: 10m (Fig. 1), 100 um (Fig. 2 et 3).

Fig. 1-3. Origin and evolution of sterile veins. 1: single open cavity at apothecioid

stage; 2: individualized sterile veins; 3: more numerous sterile veins. Scale:

10um (Fig. 1), 1004m (Fig. 2 and 3).

Source : MNHN, Paris

TUBER MELANOSPORUM 167

Fig. 4 - Emergence de deux veines stériles (flèches) au centre d'une écaille du

péridium. Echelle: 20um.

Fig. de Opening of two sterile veins (arrows) in the center of a peridial scale. Scale:

um.

Source : MNHN, Paris

168 A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT

1- ORIGINE ET ÉVOLUTION DES VEINES STÉRILES

Les veines stériles de la glébe dérivent de la cavité du trés jeune

ascocarpe au stade apothécioide (Parguey-Leduc et al., 1985, 1989); celle-ci,

primitivement ouverte à l'extérieur (Fig. 1) se ferme progressivement du fait

que sa marge, fortement redressée, se développe en direction du centre

jusqu'à former, par soudure, une voüte continue. D'abord unique, la cavité,

désormais close, se fragmente en boyaux sinueux (Fig. 2) qui, sur les coupes

d'ascocarpes frais, ont un aspect nacré. Ces boyaux se multiplient au cours

de la croissance en volume de l'ascocarpe, devenu globuleux (Fig. 3): ils

constituent ainsi les veines stériles, sinueuses et ramifiées, entre lesquelles les

veines fertiles, contenant l'appareil sporophytique, puis les asques, sont

étroitement moulées. Certaines veines stériles se développent jusqu'aux

écailles du péridium, qu'elles percent, et entrent de ce fait en relation avec

l'extérieur (Fig. 4). Lorsque l'ascocarpe arrive à maturité les veines stériles

sont comprimées par la masse des asques, formés en trés grand nombre; el-

les apparaissent alors sous forme de cordons étroits grisátres.

Il - STRUCTURE DES VEINES STERILES

Au sein de la glèbe d'un jeune ascocarpe globuleux, les veines stériles

(vs, Fig. 5) s'opposent trés nettement, sur les coupes, aux veines fertiles (vf);

elles apparaissent en effet plus claires et constituées d'éléments plus

réguliérement ordonnés. Les veines stériles se composent de trois parties

emboitées qui sont, en partant d'une veine fertile (Fig. 5 et Fig. 6):

- la sous-palissade /spd), en continuité avec les filaments de la veine

stérile, formée de cellules uninucléées, arrondies en coupe, intimement

réunies par un ciment;

- la palissade (pd) de paraphyses: régulièrement disposées parallèlement

entre elles, cellés-ci sont étroitement serrées les unes contre les autres à la

base; elles s'individualisent plus nettement dans leur partie moyenne, oü cer-

taines se ramifient par bifurcation (Fig. 6 et Fig. 7), ce qui permet la crois-

sance des veines; leurs extrémités libres sont noyées dans un mucilage (mu).

Les cellules des paraphyses sont généralement binucléées, leurs deux noyaux

se localisant souvent au niveau des bifurcations;

- des filaments stériles (f), occupant la partie axiale, plus claire, des

veines stériles. Produits par la cellule distale de certaines paraphyses, dés le

stade apothécioide, ils sont constitués de cellules étroites et allongées, s'al-

longent en se ramifiant et s/anastomosant entre eux; il se forme ainsi un

réseau láche (Fig. 8), qui retient l'air entre ses mailles (d’où le nom de veine

aérifère, souvent utilisé pour désigner les veines stériles, et l'aspect nacré

caractéristique). À la constitution du réseau aérifère peuvent également par-

ticiper des paraphyses qui s/allongent au-delà de la surface de la palissade en

conservant leur calibre, supérieur à celui des autres éléments du réseau.

Aprés l'ouverture de veines stériles à la surface du péridium sont sou-

vent visibles (Fig. 9A et 9B), entre les extrémités libres des paraphyses et

Source : MNHN, Paris

TUBER MELANOSPORUM 169

ASS

AS,

Fig. 5 - Détail d'une portion d'ascocarpe. e: écaille du péridium; f; réseau de fila-

ments stériles; pd: palissade de paraphyses; spd: sous-palissade; vf: veine fer-

tile; vs: veine stérile. Echelle: 1004m.

Fig. 5 - Detail of a portion of an ascocarp. e: peridial scale; f: sterile filamentous

network; pd: palisade of paraphyses; spd: under-palisade; vf: fertile vein; vs:

Sterile vein. Scale: 100um.

Source : MNHN, Paris.

A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT

Fig. 6 -

Détail d'une veine stérile (dessin réalisé à partir d'une micrographie

électronique). f: filament stérile du réseau; mu: mucilage; pd: paraphyse; spd.

sous-palissade. Echelle: lum

Fig. 6 - Detail of a sterile vein (graphs drawn from an electron-microscope plate). f:

thread of the sterile network; mu: mucilage; pd: paraphysis; spd: under:

palisade. Scale: Lum.

Source : MNHN, Paris

TUBER MELANOSPORUM 171

Fig. 7 - Détail d'une veine stérile (microscopie électronique). La flèche épaisse indi-

que un empilement de saccules, la flèche mince le passage d'une mitochondrie

par un pore septal, et les étoiles des enclaves cytoplasmiques. Contraste par

acétate d'uranyle et citrate de plomb. Echelle: 2um.

Fig. 7 - Detail of a sterile vein (electron microscope). The thick arrow points to

Stacked cisternae, the thin arrow indicates a mitochondrion engaged in a septal

pore and stars two cytoplasmic compartments. Contrast with uranyl acetate

and lead citrate. Scale: 2um.

Source : MNHN, Paris

172 A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT

Fig. 8 - Détail de la formation du réseau stérile (f) à partir de l'extrémité de

paraphyses (pd). Echelle: Sum.

Fig. 8 - Detail of the formation of the sterile network (f) from the apical cell of

paraphyses (pd). Scale: Sum.

Fig. 9 - Localisation de bactéries dans une veine stérile (microscopie électronique). b:

bactérie; mu: mucilage. Contraste par acétate d'uranyle et citrate de plomb.

Echelle: 2um (Fig. 9A); lum (Fig. 9B).

Fig. 9 - Bacteria within a sterile vein (electron microscope). b: bacteria; mu:

mucilage. Contrast with uranyl acetate and lead citrate. Scale: 2um (Fig. 9A);

lum (Fig. 9B).

Source : MNHN. Paris

TUBER MELANOSPORUM 173

Source : MNHN, Paris

174 A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT

dans les mailles du réseau, des bactéries (5) qui ont pénétré dans l'ascocarpe

et sont retenues dans des poches creusées dans le mucilage (mu).

III - PARTICULARITÉS ULTRASTRUCTURALES

Les cellules constitutives des veines stériles (dans la sous-palissade com-

me dans la palissade et dans le réseau) présentent de manière constante des

organites ou formations qu'on ne retrouve pas en revanche avec les mêmes

caractères dans les autres parties de l'ascocarpe, ni même de façon régulière

chez les Ascomycétes. Bien visibles sur la micrographie de la palissade

présentée figure 7, ce sont notamment: des empilements de saccules (fléche

épaisse) et des enclaves à contenu d'abord clair aux electrons, puis de plus

en plus sombre (étoiles) ainsi que divers autres organites et des formations

septales.

1) Empilement de saccules et enclaves

Dans les trois couches composant les veines stériles (Fig. 10, A à D),

la plupart des cellules contiennent un empilement de saccules aplatis dont la

structure évoque soit un dictyosome, soit des nappes de réticulum

endoplasmique lisse. Unique dans chaque cellule, l'empilement comporte des

saccules en nombre variable (généralement une dizaine à une trentaine, voire

plus); régulièrement et étroitement superposés, ces saccules s'écartent seu-

lement légèrement à chaque extrémité, région où ils sont faiblement dilatés

en ampoules. De petites vésicules sont parfois visibles en périphérie (Fig.

10B). Saccules et vésicules ne réagissent pas au test de Thiéry (Fig. 10A et

10C), leur contenu apparaît toujours relativement clair.

Ces formations ont une localisation variée dans les cellules, parfois re-

marquablement proche du noyau (Fig. 10A) ou de la paroi cellulaire (Fig.

10D): dans ce dernier cas, des vésicules sont visibles dans l'espace

périplasmique, contribuant vraisemblablement à l'élaboration de la paroi et

du ciment intercellulaire.

Une autre fonction peut étre attribuée aux saccules endoplasmiques des

empilements: il s'agit de la formation d'enclaves cytoplasmiques. Pour cela,

un saccule limitant de l'empilement se détache progressivement de celui-ci

(Fig. 11B); il s'incurve vers le cytoplasme jusqu'à se refermer sur lui-méme

en englobant une portion approximativement sphérique de ce dernier.

D'abord clair et finement granuleux, le contenu de ces enclaves subit à

l'intérieur du saccule limitant une évolution qui se manifeste par une densité

croissante aux électrons (de 1 à 3, Fig. 11A et Fig. 11C). Après leur indi-

vidualisation, les enclaves s'éloignent de l'empilement de saccules générateur

et se répartissent dans tout le volume de la cellule.

Les empilements de saccules endoplasmiques et les enclaves qui peu-

vent en dériver n'ont été observés, chez le Tuber melanosporum, que dans les

veines stériles. Leur seul aspect ultrastructural ne permet pas de les rattacher

de facon certaine au réticulum endoplasmique ou à l'appareil de Golgi dont

ils pourraient cependant avoir la fonction sécrétrice (Dargent et al., 1982).

Source : MNHN Paris

TUBER MELANOSPORUM 175

Des formations cytoplasmiques comparables ont été décrites chez d'au-

tres Ascomycétes et leur interprétation différe selon les auteurs.

Les dictyosomes bien caractérisés, décrits pour la première fois chez un

Ascomycéte par Moore & Mc Alear (1963), sont des empilements de

saccules environnés de vésicules et présentant une polarité nette; celle-ci se

manifeste par exemple par une dilatation croissante des saccules de la face

interne vers la face externe. Les formations observées chez le T.

melanosporum sont dépourvues de polarité: leurs saccules sont longs,

étroitement superposés et d'épaisseur régulière; peu de vésicules sont visibles

à leur périphérie.

Le réticulum endoplasmique comporte, chez les Ascomycètes, des

vésicules et saccules habituellement dispersés dans le cytoplasme. Des empi-

lements de ces saccules ont toutefois été observés, par exemple dans des

asques (Schrantz, 1965; Delay, 1966; Furtado, 1971), des ascospores

(Schrantz, 1971) et également dans des paraphyses (Schrantz, 1979). Dans ce

dernier cas, relatif à un Discomycète, l'Anthracobia maurilabra, les empi-

lements observés dans l'article terminal des paraphyses ont les mêmes

caractéres ultrastructuraux que ceux du T. melanosporum: empilements épais

et denses, saccules longs, tous semblables et réguliérement superposés dans

leur partie moyenne mais pouvant, à partir de leur extrémité et sur chacune

des faces de l'empilement, s'incurver dans le cytoplasme. Pour Schrantz, ces

saccules jouent un róle dans l'édification des parois, sans étre toutefois de

véritables dictyosomes. La fonction de compartimentation du cytoplasme,

que nous avons décrite chez le T. melanosporum n'a pas été, à notre connais-

sance, signalée chez d'autres Ascomycètes.

2) Autres organites

Nous mentionnerons, en raison de leurs caractères particuliers ou de

leur abondance (Fig. 12), les mitochondries (m) en forme de haltère ou de

selle, forme peu courante chez les Ascomycètes (Delay, 1966; Schrantz, 1971;

Campbell, 1973), les lomasomes (/o) et des vacuoles (v) à contenu figuré.

3) Les septums

Ils sont perforés en leur centre et toujours accompagnés de corps de

Woronin, totalement opaques aux électrons et réactifs au test de Thiéry.

Leur pore peut demeurer ouvert, permettant ainsi le transfert de divers

organites (noyau; mitochondrie - Fig. 7, flèche mince; corps de Woronin -

Fig. 13A) d'une cellule vers sa voisine. Il peut également être obturé par une

formation dense aux électrons, après contraste classique ou test de Thiéry;

celle-ci est tantôt lenticulaire (Fig. 13B), tantôt formée de deux parties

symétriques tronconiques appliquées l'une contre l'autre par leur plus petite

face (Fig. 13C).

, Dans une étude minutieuse des septums des Pézizales, Curry &

Kimbrough (1983) ont distingué, pour les cellules stériles des Ascomycètes,

deux types septaux: le type Neurospora, à bouchon opaque aux électrons

formé de deux parties symétriques, et le type Peziza, oü une structure

lamellaire est présente dans le pore. Ce second type semble caractériser les

Source : MNHN, Paris

176 A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTAN

(microscopie électronique). A: cellule de la alissade; B: cellule de

paraphyse; C et D: cellules du réseau. Technique de Thiéry: A et C; contraste

par acétate d'uranyle et citrate de plomb: B et D. Echelle: 0,5um (Fig. 10 A, B

et C); 0,25um (Fig. 10 D).

Fig. 10 - Detail of cells in sterile veins showing stacked cisternae (electron microsco-

pe). A: cell of the under-palisade; B: cell of paraphysis; C and D: cells of the

network. Thiéry's test (A and C); contrast with uranyl acetate and lead citrate

(B and D). Scale: 0.5um (Fig. 10A, B and C); 0.25um (Fig. 10 D).

Fig. 11 - Détail de paraphyses montrant les enclaves cytoplasmiques (microscopie

électronique). A: paraphyses, de 1 á 3: évolution des enclaves; B: les saccules li-

mitant l'empilement s'en détachent pour former une jeune enclave; C: enclaves

au stade final. Contraste par acétate d'uranyle et citrate de plomb. Echelle:

2um (Fig. 11A); 0.54m (Fig. 11B); Lum: (Fig. 11C).

Source : MNHN, Paris

== 4 LA or

Fig. 11 - Detail of paraphyses showing cytoplasmic compartments (electron micro-

scope). A: paraphyses, from 1 to 3: evolution of compartments; B: limiting

cisternae of the stack detach to delimit a young compartment; C: compartment

at final stage. Contrast with uranyl acetate and lead citrate. Scale: 2um (Fig.

11A); 0.5um (Fig. 11B); 1um (Fig. 11€).

Source : MNHN, Paris

178 A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT

Fig.

12 - Détail de paraphyses montrant divers organites (microscopie électronique).

lo: lomasome; m: mitochondrie; v; vacuole. Contraste par acétate d'uranyle

et citrate de plomb. Echelle: lum.

12 - Detail of paraphyses showing various organelles (electron microscope). lo:

lomasome; m: mitochondrion; у: vacuole. Contrast with uranyl acetate and

lead citrate. Scale: I um.

13 - Détail de septums de paraphyses (microscopie électronique). A: pore ou-

vert; B et C: pores obturés par des formations denses aux électrons. Contraste

par acétate d'uranyle et citrate de plomb: C; technique de Thiéry: A et B.

Echelle: 0,54m.

. 13 - Detail of septal structures in paraphyses (electron microscope). A: open

pore; C and D: pores plugged by electron-opaque bodies. Contrast with uranyl

acetate and lead citrate: C; Thiéry’s test: A and B. Scale: 0.5um.

Source : MNHN, Paris

TUBER MELANOSPORUM 179

Source : MNHN, Paris

180 A. PARGUEY-LEDUC, M.C. JANEX-FAVRE et C. MONTANT

Pézizales (Kimbrough & Curry, 1985, 1986a et b), tandis que le premier se-

rait fondamentalement propre aux Pyrénomycétes et Deutéromycétes (Curry

& Kimbrough, 1983).

En ce qui concerne le T. melanosporum, les septums de ses hyphes

stériles, lorsqu'ils ne demeurent pas ouverts permettant le passage

d'organites entre deux cellules voisines, se rattachent au type Neurospora; il

en est de même de ceux du Tuber magnatum, selon les micrographies de

Scannerini (1968). En revanche, chez une autre Tubérale, du genre Terfezia,

nous avons observé des septums du type Peziza (Janex-Favre et al., 1988).

Ainsi, la corrélation entre type septal des éléments stériles et position

systématique, établie par Curry et Kimbrough pour les Pézizales, ne semble

pas pouvoir être confirmée chez les Tubérales.

CONCLUSION

Comme nous l'avons déjà fait remarquer dans la premiere partie de ce

travail, une des caractéristiques essentielles de l'ascocarpe du CE

melanosporum réside dans la dissociation, au sein de la glébe, des éléments

fertiles et stériles qui, de ce fait, ne constituent pas un hyménium, comme

chez les autres Eu-Ascomycétes. En effet, l'appareil sporophytique et les

asques sont localisés dans les veines fertiles, tandis que les paraphyses tapis-

sent la cavité des veines stériles.

Une autre particularité notable du T. melanosporum concerne les

paraphyses. Selon la régle, celles-ci sont disposées parallèlement entre elles,

en palissade, mais au lieu d'étre libres, leurs extrémités produisent des fila-

ments réunis en un réseau; ce dernier n'a pas d'équivalent chez les autres

Eu-Ascomycétes: son mode de formation exclut en effet qu'on le rattache au

réseau paraphysoide ou aux pseudo-paraphyses qui peuvent être présents

dans la cavité d'un ascocarpe classique (Chadefaud, 1960, 1982).

Enfin, au point de vue cytologique, les différentes catégories de cellules

des veines stériles montrent, à l'échelle ultrastructurale, des caractéres origi-

naux, en particulier la présence d'empilements de saccules dont la nature

exacte est difficile à établir. Il semble toutefois que ces formations puissent

être rattachées plutôt au système du réticulum endoplasmique qu'à l'appareil

de Golgi, du fait du grand nombre de saccules constitutif, de la régularité de

leur disposition, de leur longueur et de l'absence de réactivité de leurs mem-

branes au test de Thiéry.

Ces nouvelles observations confortent l'idée, déjà plusieurs fois

exprimée, que le T. melanosporum, ainsi probablement que l'ensemble du

genre Tuber, doit être maintenu au sein des Discomycètes, dans un ordre

distinct, celui des Tubérales. Cette position, rappelons-le, se fonde sur des

arguments de divers ordres: structure et développement de l'ascocarpe

(Parguey-Leduc et al., 1985, 1987a, 1989), particularités des asques (Janex-

Favre & Parguey-Leduc, 1990), de l'ascosporogénése et des ascospores

(Parguey-Leduc et al., 1987b).

Source : MNHN, Paris

TUBER MELANOSPORUM 181

Remerciements:

Nous remercions B. Darchen (Station biologique des Eyzies), R. Gleize

(Valréas) et M. Kulifaj (Université Paul Sabatier de Toulouse) qui nous ont ai-

mablement procuré des échantillons de T. melanosporum, ainsi que M. Avnaim, J.

Bidoux, C. Fournigault et N. Jampsin pour leur précieuse et amicale collaboration

technique.

le concours financier du Conseil Régional de Midi-Pyrénées (décision n°

éc) auquel nous exprimons également nos remerciements.

BIBLIOGRAPHIE

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Lophodermella sulcigena (Rostr.) v. Hôhn. Protoplasma 78: 69-80.

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DINAMICA DE CRECIMIENTO Y CARACTERIZACION DE

ALGUNOS HONGOS ECTOMICORRICICOS EN CULTIVO*

P. TORRES y M. HONRUBIA

Departamento de Biología Vegetal (Botánica).

Facultad de Biología. Universidad de Murcia.

30071, Murcia, España.

RESUMEN - Se describen las características en cultivo de Suillus collinitus (Fr.)

O.Kuntze, S. granulatus (L.:Fr.) O.Kuntze, Rhizopogon roseolus (Corda) Th.M.Fr.,

R. luteolus Fr., Amanita muscaria (L.:Fr.) Hooker y Lactarius deliciosus L.:Fr., po.

tencialmente micorricicos con Pinus halepensis Miller. Los medios utilizados Soi

MMN, MMN(+ glucosa), PDA, Raper, Hagem y MEA 2%. Todos ellos conside-

rando un rango de pH entre

5 y 7.5. Se comentan los medios y pH donde cada una

de las especies tratadas ha manifestado un crecimiento mas vigoroso.

RÉSUMÉ - Description des caractéristiques culturales de Suillus collinitus (Fr.) O.

Kuntze, S. granulatus (L.:Fr.) O. Kuntze, Rhizopogon roseolus (Corda) Th. M. Fr.

К. luteolus Fr., Amanita muscaria (L.:Fr.) Hooker et Lactarius deliciosus L.:Fr.,

mycorrhiziens potentiels de Pinus halepensis Miller. Les milieux utilisés son: MMN,

MMN(-* glucose), PDA, Raper, Hagem et MEA 2%, tous dans un éventail de pH

entre 5.5 et 7.5. Commentaires sur les milieux et les pH qui ont donné pour chaque

espèce la croissance la plus vigoureuse.

INTRODUCCION

Uno de los principales requerimientos para afrontar trabajos sobre

ectomicorrizas es disponer de buenas colecciones de cultivo de los hongos

que forman tales asociaciones biotrófico-mutualistas.

El cultivo in vitro de estos hongos, en su fase vegetativa, es realmente

sencillo. Sin embargo, para realizar inoculaciones miceliares sobre las plan-

las objeto de estudio, se precisa disponer de una gran cantidad de inóculo

(micelio), que además debe ser vigoroso en su crecimiento (Mikola, 1973;

Trappe, 1977). Por consiguiente, resulta imprescindible optimizar el cultivo

in vitro y tener un buen conocimiento de su comportamiento, en tales

condiciones, de aquellas especies füngicas con las que se pretende trabajar.

5 Este trabajo forma parte del proyecto de investigación, n^ A-12, contratado en el

ámbito del Proyecto LUCDEME entre el ICONA del Ministerio de Agricultura

español y la Universidad de Murcia.

Source : MNHN, Paris

184 P. TORRES y M. HONRUBIA

Esta experiencia se planteó como paso previo y básico para la

producción a gran escala de inóculo miceliar, de hongos potencialmente

ectomicorricicos de Pinus halepensis Miller.

La elección de esta conifera como elemento base de trabajo se debe a

su importancia e interés en los programas de reforestación y/o aforestación

en las zonas xéricas del mediterráneo occidental.

Las 6 especies füngicas seleccionadas lo fueron por su potencialidad

micorrícica con el elemento vascular utilizado, basándonos en la propia

experiencia y en los datos bibliográficos existentes. En este sentido cabe

resaltar la precariedad de información habida, referente a los hongos

constatados como micorrícicos de pino carrasco.

Wahl (1954) describe la asociación simbiótica entre Pimus halepensis y

Suillus granulatus. Trappe (1962) recoge estos datos y cita Suillus granulatus

como único simbionte de P. halepensis, mientras que a Rhizopogon roseolus,

R. luteolus, Lactarius deliciosus y Amanita muscaria los refiere ligados a

diversas especies de pinos, pero no a esta en concreto. Respecto a Suillus

collinitus, última de las especies aquí tratadas, no se ha comprobado in vitro

su asociación simbiótica con planta alguna, aunque, Chevalier & Detolle

(1984) describen la micorrización artificial (en macetas) de Suillus collinitus

con Pinus halepensis.

El objetivo principal de nuestro trabajo fue conocer las respuestas de

crecimiento de los seis hongos mencionados, frente a una diversidad de

medios de cultivo, dentro de un rango de pH preestablecido. Esto nos

permitirá decantarnos a posteriori por uno de esos medios y pH, a fin de

obtener la mayor cantidad de inóculo posible, en un espacio de tiempo

determinado. Tambien alcanzaremos a conocer la tasa de crecimiento

miceliar, lo que nos permite saber cual es el momento idóneo de

transferencia del micelio, para intentar sintetizar im vitro la micorriza de

cualquiera de estos hongos con plántulas de P. halepensis.

MATERIAL Y METODOS

Localidades de procedencia de las cepas fúngicas

A continuacion se relacionan las especies fúngicas estudiadas,

localidades de origen, vegetación actual de las zonas, fecha de recogida del

material, número de referencia del cultivo y número del registro del material

testigo depositado en el herbario MUB de la Universidad de Murcia.

Localidad UTM | Vegetación actual N” registro

Herbario MUB

Suillus collinitus EI Valle (Murcia) XG 6497 | Pinus halepensis MH 502

Suillus granulatus Riopar (Albacete) WH 4959 | Pinus pinaster MH 506

Rhizopogon roseolus | El Valle (Murcia) XG 6497 | Pinus halepensis MH 504

Rhizopogon luteolus | Riopar (Albacete) WH 4855 | Pinus nigra MH 505

Amanita muscaria Riopar (Albacete) WH 4959 | Pinus pinaster MH 509

Lactarius deliciosus __| Riopar (Albacete) WH 4959 | Pinus pinaster MH 508

Source : MNHN, Paris

HONGOS ECTOMICORRICICOS EN CULTIVO 185

Aislamientos

Se realizaron a partir de esporocarpos jóvenes. En el caso de hongos

agaricoideos se utilizaron tejidos próximos al subhimenio, mientras que de

los hipogeos se obtuvieron tejidos de la parte central de la gleba.

Los trozos de tejido extraidos se sembraron inicialmente en MMN

inclinado y fueron incubados en condiciones de laboratorio. El micelio

formado se transfirió a placas con el mismo medio. Despues de cuatro

semanas de incubación, los micelios resultantes se repicaron definitivamente

a nuevas placas con los medios ensayados.

Medios de cultivo ensayados y rango de pH

Hagem: Modess (1941), Raper: Raper & Raper (1972), MMN: Marx

(1969), PDA: Lacy & Bridgmon (1962), MMN (modificado: + 10g. de

glucosa), MEA 2%.

Cada uno de los medios se preparó a cinco pH diferentes ( 5.5: 6.0: 6.5:

7.0 y 7.5), ajustado con CIH y NaOH.

Diseño de la experiencia

Para cada uno de los medios y correspondientes pH se dispusieron

sendas colecciones de placas, de 10 réplicas cada una.

Una vez sembrados los micelios, la mitad de las placas de cada

colección fue sometida a un choque térmico de 4°C durante 24 horas.

Posteriormente, todas las placas se incubaron a 24°C, durante 60 dias.

Periódicamente se estudiaron las características culturales (descripción.

de la colonia, velocidad de crecimiento, etc) de cada una de las colecciones

de placas, conforme a la terminología indicada por Chu-Chou & Grace

(1984).

RESULTADOS Y DISCUSION

Caractéres de cultivo

En la Tabla I se recogen las características culturales de las 6 especies

füngicas estudiadas.

Los dos Suillus responden a patrones culturales similares. Sus micelios

presentan coloraciones parecidas. Suelen producir cordones miceliares,

especialmente en medios ricos en azúcares (MMN + glucosa y PDA); si

bien Suillus collinitus desarrolla este tipo de estructura en la casi totalidad de

los medios, salvo en Raper y MEA 2%.

El máximo crecimiento de S. collinitus, a los 60 dias de incubación

($5cm) ocurrio en medio PDA (Fig.1E), medio no excesivamente utilizado

para hongos ectotróficos. Este hecho se ha repetido en alguno de los otros

cinco hongos estudiados.

Source : MNHN, Paris

P. TORRES y M. HONRUBIA

186

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Source : MNHN, Paris

187

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HONGOS ECTOMICORRICICOS EN CULTIVO

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Source : MNHN, Paris

Diámetro de la colonia (em)

188 P. TORRES y M. HONRUBIA

Por su parte, S. granulatus alcanzó

máximo

crecimiento en

MMN(- glucosa), Hagem y PDA (Fig.1F), siendo MMN el medio donde el

tamaño de la colonia fué minimo (4 cm).

Las características culturales de los dos hipogeos estudiados son

se trata de géneros

filogenéticamente próximos (Singer, 1986). Sus micelios son de color pardo,

con tonalidades rojizas, amarillentas, etc., en función del medio donde se les

hizo crecer. La formación de cordones miceliares estuvo restringida a

Rhizopogon luteolus cultivado en MMN(+ glucosa).

parecidas а las de los Suillus, no

en valde

Fig. 1.- Máximo diámetro de las colonias en cada medio de cultiv

= = .

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A: Amanita

muscaria; B: Lactarius deliciosus; C: Rhizopogon luteolus, D: Rhizopogon

roseolus; E: Suillus collinitus; F: Suillus granulatus.

Fig. | - Diamétre maximal des colonies dans chaque milieu de culture.

Source : MNHN, Paris

HONGOS ECTOMICORRICICOS EN CULTIVO 189

La respuesta de crecimiento frente a los distintos medios de cultivo ha.

sido en general inferior para los dos Rhizopogon, que para los boletáceos

epigeos.

К. roseolus alcanzó su máximo crecimiento (7.2cm) en MMN

(+glucosa) (Fig.1D), mientras que R. luteolus (Fig. IC) lo hizo en PDA

(7.5cm). El desarrollo que alcanzaron las colonias de ambos hipogeos en

MMN fué muy bajo, con 5.0cm y 3.2cm para R. roseolus y R. luteolus

respectivamente.

Amanita muscaria presentó un crecimiento máximo bastante

homogéneo en todos los medios utilizados (Tabla II) con un ligero

incremento en Hagem respecto de los demás, si bien poco significativo. El

mayor diámetro de la colonia fué el alcanzado en MEA 2% (7.2cm) (Fig.

IA).

Los resultados obtenidos con Lactarius deliciosus no dejan de ser

interesantes, sobre todo por la disparidad de los mismos. El micelio resultó

denso o muy denso en Raper y PDA respectivamente. La variabilidad de

coloraciones fue muy evidente, dependiendo del medio de cultivo. Solo en

Hagem aparecieron los tintes verdosos, típicos de los carpóforos vetustos,

manipulados o rasgados. El máximo tamaño de la colonia se obtuvo en

МЕА 2% (Fig.1B), donde en sólo 20 dias de cultivo se alcanzaron los 8.5em

de diámetro. Ahora bien, este micelio era superficial y poco vigoroso.

Respuesta de crecimiento frente a pH y medios de cultivo

En general no parece existir una correlación entre pH y crecimiento de

cualquiera de los hongos estudiados, sin embargo el medio de cultivo

influye claramente tanto en la velocidad de crecimiento como en las

características de los micelios obtenidos (Tabla II).

En la Tabla II se aprecian fuertes oscilaciones en el crecimiento

miceliar de S. collinitus respecto de los seis medios ensayados, a medida que

aumenta el pH. En PDA se alcanzó el máximo desarrollo de la colonia a

pH 7.5. Pero esto no es significativo ya que en el resto de medios, los

micelios alcanzaron su mayor diámetro a pH neutro o ligeramente ácido.

En S. granulatus solo en medio Hagem se aprecia una cierta correlación

entre incremento de pH y diámetro de la colonia. El mayor desarrollo de

los micelios se obtuvo en MMN (-- glucosa), PDA y Hagem, a pH 5.5, 6.5 y

7.5 respectivamente. En MMN el crecimiento fué lento y el máximo tamaño

alcanzado por la colonia no superó 3.8cm a los 60 días de cultivo .

Los dos hipogeos tampoco ofrecieron una clara correlación entre su

crecimiento y el aumento de pH en los diferentes medios. Solo en Hagem y

MMN (+ glucosa) parace existir una respuesta lineal para ambos hongos. R.

roseolus alcanzó su mayor desarrollo a pH 7.5 en MMN (+ glucosa) y PDA.

Por su parte, el mayor diámetro de las colonias de R. luteolus fué el

obtenido en PDA, a pH 6.5.

A. muscaria tuvo un comportamiento muy diferente en cada uno de

los medios ensayados frente al incremento del pH. Las tasas de crecimiento

Source : MNHN, Paris

190 P. TORRES y M. HONRUBIA

Tiempo Hager MEA 2% мын

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Tabla IL- Diámetro de las colonias (cm) a lo largo de 60 dias en cultivo. ():

Ausencia de datos, (Negrita): Tamaño máximo alcanzado por la colonia.

de este hongo fueron bastantes similares, independientemente del pH

considerado.

En L. deliciosus lo mas destacable fué su limitado crecimiento en

cualquiera de los seis medios ensayados. Su respuesta frente al pH resultó

totalmente aleatoria. El mayor diámetro de las colonias se obtuvo en MEA

2%.

En cuanto al tratamiento frío al cual se sometieron la mitad de las

placas sembradas, no se observó ninguna diferencia significativa en el

crecimiento de los micelios para cualquiera de las especies cultivadas (Fig.1)

Source : MNHN, Paris

Amanita muscaria

Rhizopogon roseolus Rnizopogon luteolus _ Lactarius deliciosus

Suillus collinitus

Suillus granulatus

HONGOS ECTOMICORRICICOS EN CULTIVO 191

Tiempo MMN (+6) PDA

(dias) | pH 6,5 5 65 775

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12 0,6 1 0,6 03

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27 15 24 14 1

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12 га 17 09 о ов оз 12

20 з ае T$ 22 25 16 18

27 36 38 21 *- 85 25 27

36 4 44 26 48 75 34 39

48 5 5,5 32 56 8 48 5

56 5 55 4,7 6,1 8,5 49 56

60 5 55 47 61 85 5 6

6 16 19 21 ne 108

12 26 3 35 о o 348 =à

20 44 87 4 з. зз aa cp

27 62 48 5 a 55 3 1.8

36 73 64 6,6 та та 48 3

48 8,5 73 76 та та 6 a

56 8,5 8,3 8,5 тв 74 75 6,5

60 8.5 183 85 26 74 75 65

ableau II. - Diamétre des colonics (cm) jusqu'à 60 jours de culture.

résultat, (gras): valeur maximale obtenue pour la colonie.

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SOME INTERESTING AGARICS AND A RARE SPECIES

OF SCLERODERMA PRESENTED AT

THE II AND III MYCOLOGICAL STAGES OF

ESPLUGAS DE LLOBREGAT (BARCELONA, CATALUNA)!

G. MORENO*, R. PÓDER**, C. ILLANA* and F. ESTEVE-RAVENTÓS*

*Dpto. de Biología Vegetal (Botánica), Universidad

de Alcalá de Henares, Madrid, España.

** Institut für Mikrobiologie der Universitä

Innsbruck, Austria.

ABSTRACT - During the II and III mycological stages held in Esplugas de Llobre-

gat (Barcelona) in 1988 and 1989, some interesting agarics and Gasteromycetes were

Studied by us. The results are presented in this work, where the following taxa are

described or commented: Amanita franchetii, Calocybe ionides, Entoloma corvinum,

E. hebes, Lyophyllum leucophaeatum, Pluteus podospileus, Psathyrella caput-medusae.

Russula cavipes, R. cistoadelpha, R. nuragica, R. subazurea, Xerocomus moravicus

and Scleroderma fuscum. Three species have not been previously recorded in the

Iberian Peninsula: Lyophyllum leucophaeatum, Pluteus podospileus, and Russula nura-

gica. The new combination Panaeolus cyanescens var. bisporus Moreno &

Esteve-Raventós comb. nov. is proposed.

RÉSUMÉ - Nous étudions les espèces suivantes d'Agaricales et de Gastérom

Amanita franchetii, Calocybe ionides, Entoloma corvinum, E. hebes, Lyopl

leucophaetum, Pluteus podospileus, Psathyrella caput-medusae, Russula cavipes, R.

cistoadelpha, R. nuragica, R. subazurea, Xerocomus moravicus et Scleroderma fuscum

récoltées lors de la llème et Illème exposition mycologique de Esplugas de

LLobregat (Barcelone). Trois espéces sont nouvelles pour la mycoflore ibérique:

Lyophyllum leucophaeatum, Pluteus podospileus et Russula nuragica. Nous proposons

la nouvelle combinaison Panaeolus cyanescens var. bisporus Moreno &

Esteve-Raventós, comb. nov.

KEY WORDS : Taxonomy, Agaricales s.l., Gasterales, Catalonia, Spain.

1. This paper was presented at the "V Reunión Conjunta de Micología" held in Bar-

celona (30 Sept. to 3 Oct. 1990)

INTRODUCTION

The Mycological Stages held in Esplugas de Llobregat (Barcelona) in

1988 and 1989 proved up to be a good opportunity to study some interest-

Ing agarics. This aim of this work has been to present those species that

Source : MNHN, Paris

194 G. MORENO et al.

might be of scientific interest, due to their rarity or because of their ecologi-

cal or chorological interest, mainly for the Catalonian region.

The photographs have been made with a Nikon microscope, model La-

bophot, with an incorporated semi-automatic photographic system. The ma-

terial has been examined microscopically in Congo red and NH¿OH (5%).

The specimens have been deposited at the Herbarium of Plant Biology

(Botany) of the University of Alcala de Henares (Madrid) -H.AH-. A com-

plete protologue is indicated for those taxa not recorded previously in

Spain, according to the consulted bibliographic references, or due to their

recent creation.

CATALOGUE OF SPECIES

Amanita franchetii (Boud.) Fayod. Ann. Sci. Nat., Bot. 9: 316, 1889.

= Amanita queletii Bon & Dennis, Doc. Mycol. (Lille) 56: 22, 1984.

= Amanita aspera (Pers.:Fr.) Hooker, s. auct., non Pers.

Amanita franchetii is a well-known species in our Peninsula, mainly in

Catalonia; however, it might be convenient to emphasize some points con-

cerning its present nomenclatural treatment. The classic name A. aspera

(Pers.:Fr.) Hooker is no longer valid, the taxon described by Persoon be-

longs to a species of Lepiota (Bon, 1984). The position of À. francheti as the

valid species name relegates 4. queletii to a mere synonym.

The taxon is characterised by its yellow and thick scales on the cap and

the napiform stem covered by yellowish scaly zones under the ring. Some

infraspecific taxa have been created by the colour variation exhibited by the

species.

Material examined: Sant Grau (Gerona), in humus of Quercus suber

and Arbutus unedo, 20/X/1988, leg. G. Moreno & C. Illana, H.AH 11876.

Calocybe ionides (Bull.:Fr.) Donk, Nova Hedwigia 5: 43, 1962.

The specimens studied fit the recent description of Dermek (1987); the

purplish-violet colours of the cap and stem and the whitish to yellowish gills

are typical. Calocybe obscurissima (Pers.) Moser shows brown, never violet,

colours.

C. ionides has been previously recorded in the Basque Country (Laco-

izqueta, 1885; Pérez del Moral, 1979) and in central Spain (Esteve- Raventós,

1987). A colour plate has been recently published in the VI collection of

"Bolets de Catalunya" (n" 259, 1990), edited by the Catalonian Mycological

Society.

Material examined: Santa Fe del Montseny (Barcelona), in humus of

Fraxinus excelsior and Acer sp., 17/X/1989, leg. R. Póder $ G. Moreno.

H.AH 11874.

Entoloma corvinum (Kühner) Noordel., Nord. J. Bot. 162, 1982. Fig. 1-3.

= Rhodophyllus corvinus Kühner, Rev. Mycol. (Paris) 19: 4, 1954.

Source : MNHN, Paris

ESPLUGAS DE LLOBREGAT. 195

This rare species shows a beautiful dark-blue cap, neither striate nor

hygrophanous, covered by little squamules; the concolorous stem becomes

paler when dry and the gills never exhibit a blue edge. Its spores show a

great variability (from nearly isodiametric to heterodiametric), Q= 1,1-1,6.

In Spain, it has been probably mistaken with E. chalybaeum ог Е

mougeotii. E. serrulatum shows a dark-blue gill edge. It has been previously

recorded from Granada (Noordeloos, 1987) and Jaén (Ortega, 1990).

Material examined: Santa Fe del Montseny (Barcelona), among grass

in a mixed forest of Fraxinus excelsior and Acer sp., 17/X/89, leg. R. Póder

& G. Moreno. H.AH 11875.

Entoloma hebes (Romagn.) Trimbach, Doc. Mycol. (Lille) XI(44): 6, 1981.

Fig. 4-7.

= Entoloma hirtipes var. hebes (Romagn.) Esteve-Raventós, Bol. Soc. Micol.

Madrid 14: 147, 1990.

Entoloma hebes is a member of section Nolanea with “mycenoid” habit,

umbonate cap and mealy smell. Heterodiametric spores and a sterile gill

edge composed of variable cystidia are similar to E. hirtipes and its position

as a distinct species from this is arguable.

It was only known in our Peninsula from the province of Madrid in

humus of Quercus pyrenaica forest (Esteve-Raventés & Moreno, 1990).

Material examined: Santa Fe del Monseny (Barcelona), in humus of

Fraxinus excelsior and Acer sp., 17/X/89, leg. R. Póder & G. Moreno, H.AH

11878.

Lyophyllum leucophacatum (P. Karst.) P. Karst., Acta Soc. Fauna Fl. Fenn.

2: 3,1881. Fig. 8-14.

Cap 3,5-5em diam., convex, brownish-grey at first, then blackening.

Gills emarginate to adnate, clos becoming black when old or when

touched. Stem concolorous, 3,5 x 0,6-0,8cm, cylindrical to bulbous,

bruising grey-brown. Smell faint or none. Epicutis formed by branched,

clamped hypahe, 3-6,5um wide. Spores 6-9 x 2-34m, cylindrical to fusiform,

hyaline, non-amyloid, somewhat warty. Basidia 4-spored, clavate and

clamped. Marginal cystidia very variable, generally filiform with short ex-

crescences, sparse

… The specimens studied fit mostly the description of Clemengon (1982).

There does not seem to be any reference to this species in our geography,

not even under the epithet fimatofoetens (Secr.) J. Schaeff.

Material examined: Santa Fe del Montseny (Barcelona), in humus of

Abies alba and Fagus sylvatica, 17/X/89, leg. Soc. Micol. Esplugas de Llo-

bregat. H.AH 11881.

Panaeolus cyanescens Berk. & Broome var. bisporus (Malenç. & Bertault)

Moreno & Esteve-Raventós comb. nov., Fig. 16-22.

Source : MNHN, Paris

196 G. MORENO et al.

1-3. Entoloma corvinum (Kiihner) Noordel. 1: marginal cystidia. 2-3: spores.

4-7. Entoloma hebes (Romagn.) Trimbach. 4-6: marginal cystidia. 7: spores.

= Copelandia papilionacea var. bispora Malenç. & Bertault, Champ. Sup.

Maroc 1: 301, 1970.

= Copelandia bispora (Malenç. & Bertault) Singer & Weeks, J. Nat. Prod.

42: 472, 1979.

The material fits the description of Moreno et al. (1986). This rare spe-

cies is characterised by its small habit, flesh with bluish tints with age or

when touched and, microscopically, by its predominantly 2-spored basidia.

citriform spores with an apical and central germ-pore and typical metuloid

cystidia with thick walls and brownish contents. The sterile gill-edge is tot-

ally formed by lageniform to utriform cystidia.

We follow Ola'h's (1970) sense of considering Copelandia as synony-

mous with Panaeolus, and that is the reason for the new combination.

Clamps are present in var. cyanescens and var. bisporus as well, according to

Ola'h (1970) and Weeks et al. (1979); moreover, bluing of the flesh occurs in

both taxa and, according to our own observations in the Iberian collections,

may be more or less distinct depending on environmental factors. Panaeolus

cyanescens var. bisporus is a typical Iberian-North African taxon while var.

Source : MNHN. Paris

ESPLUGAS DE LLOBREGAT 197

Fig. 8-14. Lyophyllum leucophaeatum (P. Karst.) P. Karst. 8-9: basidia. 10: clamp-

connections. 11-12: marginal cystidia. 13-13: spores.

“Yanescens is widespread in tropical areas (Weeks et al., 1979). This species

Was previously recorded in our country by Moreno & Barrasa (1977) and

Moreno et al. (loc. cit.), growing in grass.

Source : MNHN, Paris

G. MORENO et al.

Fig. 16-22. Panaeolus cyanescens var. bisporus (Maleng. & Bertault) Moreno &

:steve- Raventós. 16-18: facial cystidia. 19: bisporic basidia. 20: marginal cyst-

idia. 21-22: spores.

Source : MNHN, Paris

ESPLUGAS DE LLOBREGAT 199

Material examined: Sant Boi, hotel El Castel (Barcelona), in grass of

Stenotaphrum americanum, 18/X/88, leg. C. Illana, R. Póder & G. Moreno.

H.AH 11871.

Fig. 23-29. Pluteus podospileus Sacc. & Cub. in Sacc. 23-24: epicutis. 25-27: mar-

ginal cystidia. 28: basidia. 29: spores.

Source : MNHN, Paris

200 G. MORENO et al.

Pluteus podospileus Sacc. & Cub. in Sacc., Syll. Fung. 5: 672, 1887. Fig. 23-

29.

The collection showed the following characters: cap l-l,5cm, russet

brown to greyish-brown, granulate-wrinkled, with striate margin. Stipe

1,2-1,5 x 0,lcm, cylindrical, greyish, wholly covered with brown floccules.

Epicutis hymeniform, formed by clavate and fusiform to cylindrical terminal

cells, with brown vacuolar pigment. Clamps absent. Spores 7-7,5 x 4,5-6um,

ovoid to ellipsoid, slightly constricted at the middle. Basidia 4-spored and

clavate. Marginal cystidia globose to claviform, 22-35 x 14-224m, with caten-

ulate base.

According to Vellinga & Schreurs (1985), P. podospileus presents two

forms: forma podospileus and forma minutissimus; the latter lacks brown floc-

cules on the stipe or has them only in its basal part. P. minutissimus Was de-

scribed by Maire (1937) in Catalonia. No data about its presence in our

Peninsula are known by us.

P. podospileus belongs to section Celluloderma Fayod, subsection Mixti-

ni Singer, characterised by the epicutis formed by claviform cells mixed with

fusiform to cylindrical ones.

Material examined: Santa Fe del Monseny (Barcelona), in humus of

Fagus sylvatica and Corylus avellana, 17/X/89, leg. R. Póder £ G. Moreno

H.AH 11882.

Psathyrella caput-medusae (Fr.) Konrad & Maubl. Encycl. Mycol. 14

(Agaricales 1): 127, 1948. Fig. 30-34.

This rare lignicolous species of Psathyrella grows in clumps, and shows

a fibrillose to squamose cap, a wide and striated ring and a scaly, tapering

stipe. The spores are rather typical, ellipsoid to amygdaliform, without

germ-pore and with a prominent hilar-appendix. Marginal and facial cysti-

dia are variable, utriform with capitate apex to lageniform.

Calonge (1987) recorded this species from the province of Segovia

(Castilla) on Pinus sylvestris stump; it was previously known from the Myco-

logical Catalogue of the Basque Country (Anonimo, 1981).

Material examined: Campellas (Gerona), in Pinus sylvestris stump,

18/X/89, leg. Soc. Micol. Esplugas de Llobregat. H.AH 11880.

Russula cavipes Britzelm., Hymenomycetes aus Stidbayern: 7, pl. 512, f. 98,

1893. Fig. 35-39.

The fruitbodies examined showed a cap with lilaceous-violet to black-

ish colours, a white stipe and distant pale gills. Spore-print cream. Taste

acrid. Epicutis with abundant dermatocystidia and spores 9 x Sum, ellipsoid,

with crowded warts connected by a few lines.

It has been rarely recorded in Spain, only known from Catalonia up to

date (Bertaux, 1964; Singer, 1982).

Source : MNHN, Paris

ESPLUGAS DE LLOBREGAT 201

Fig. 30-34. Psathyrella caput-medusae (Fr.) Konrad & Maubl. 30-32: cystidia. 33-34:

spores.

Material examined: Campellas (Gerona), in humus of Pinus sylvestris,

18/X/89, leg. Soc. Micol. Esplugas de Llobregat. H.AH 11880.

Russula cistoadelpha Moser & Trimbach, Sydowia 34: 125, 1981. Fig. 40-46.

It has been recently described by Moreno & Esteve-Raventós (1988)

from Extremadura, growing under Cistus. It is only known from Italy,

France and Spain, but is probably widespread in mediterranean areas.

The samples showed cylindrical and septate cheilocystidia and spores

8-9 x 7-Sum, ellipsoid and warty-subreticulate.

Material examined: Sant Grau (Gerona), in humus of Cistus salviaefoli-

us and Pinus pinaster, 20/X/88, leg. С. Шапа & С. Moreno. H.AH 11870.

Russula nuragica Sarnari, Boll. Gruppo Micol. G. Bresadola, Trento 29: 16,

1986. Fig. 47-49.

Source : MNHN. Paris

202 G. MORENO et al.

Fig. 35-39. Russula cavipes Britzelm. 35-36: dermatocystidia, 37: facial cystidia. 38-

39: spores.

Source : MNHN. Paris

ESPLUGAS DE LLOBREGAT 203

Fig. 40-46. Russula cistoadelpha Moser & Trimbach. 40-43: dermatocystidia. 44-46:

spores.

Cap 3-6cm, grey with lilaceous tints at the edge, discolouring when old,

convex to slightly depressed at the centre. Gills whitish to cream, yellowing

when old. Stipe whitish, slightly greyish with age, cylindrical to claviform.

Source : MNHN, Paris

204 G. MORENO et al.

Fig. 47-49. Russula nuragica Sarnari. 47-48: epicutis. 49: spores.

Source : MNHN, Paris

ESPLUGAS DE LLOBREGAT 205

Spore-print yellow according to Romagnesi’s chart (1967). Taste mild, acrid

in the gills.

Epicutis a trichodermis, with septate, branched hyphae, where the ter-

minal cell is often a typical dermatocystidium that becomes blackish in SBA

reagent. Spores 7-9 x 6-7,5um, amyloid, warty-reticulate.

R. nuragica is only known from Italy and France (Bon, 1988). It is

characterised by the lilaceous colours of the cap on a more or less greyish

ground (similar to taxa of Griseineae). Its yellowish spore-print, the typical

dermatocystidia, spores and mediterranean habitat (mainly in Quercus suber,

Q. Ilex forests...) are unmistakable.

Material examined: Sant Grau (Gerona), in humus of Quercus suber, Q.

ilex and Q. cerris, 20/X/88, leg. G. Moreno & C. Ilana. H.AH 11877.

Russula subazurea Bon, Doc. Mycol. (Lille) 17: 34-35, 1075. Fig. 50-54.

This species was originally described from France and has been recent-

ly found in Italy (Donelli, 1988) and Spain (Moreno et al., 1990). It is a

small species of section Lilaceae, characterised by violet colours on cap and

sometimes in the stipe, white gills, pale cream spore-print, mild taste and,

microscopically, by its primordial hyphae and spores with a reticulated or-

namentation.

R. lilacea var. retispora Sing. does not share the same ecology (though

it is macro and microscopically quite similar); R. subazurea is frequent in

mediterranean areas, often under Arbutus and Quercus sps.

Material examined: Mont Negre (Barcelona), in humus of Quercus su-

ber, 19/X/88, leg. G. Moreno & C. Illana. H.AH 11869. Sant Grau (Gero-

na), in humus of Quercus suber and Arbutus unedo, 20/X/88, leg. G. Moreno

& С. Шапа. Н.АН 11868.

Xerocomus moravicus (Vacek) Herink, Česka Mykol. 18: 193-203, 1964.

— Boletus tumidus Fr. ss. Peltereau

— X. boudieri Sing. in Ann. Mycol. 40: 43 nom. nudum, 1942.

B. leonis Reid in Nova Hedwigia, Supplement: Icones of Rare and Inter-

esting Fungi, I: 7, Pl. 3a-b, 1966.

Our material fits the description of Herink (1964) nearly perfectly. The

Surface of cap is subsquamulous, finely areolate in the center. Stipe cylindri-

cal to fusiform, slightly rooting, pale ochraceous, minutely granulate punc-

tate at apex. Flesh pale ochraceous, more coloured towards the stem base.

For the following reasons, elucidated by one of us (Péder), we consider

B. leonis Reid a synonym: Reid, in his original description (1966, p. 11) not-

*d: "Nevertheless, there occurs in Czechoslovakia a closely related species -

B. moravicus (Vacek) distinguished by a pink tinge to the pileus - and it is

Possible that some of the records of this species may represent B. leonis.

Thus the account of B. moravicus published by Herink (1964) could, in part,

refer to B. leonis although it is not quite clear whether any of his specimens

Showed the characteristic surface to the pileus as found in 8. leonis ^ . How-

Source : MNHN, Paris

206 G. MORENO et al.

Fig. 50-54. Russula subazurea Bon. 50-53: primordial hyphae. 54: spores.

ever, according to this latter feature he mentioned Blum (1962) as a whitness

pileus ”... recouverte de trés légéres squamules ...” without mentioning that

Blum at the same place described the colour of pileus as "fauve ou

roussàtre".

It is correct that the specimens of X. moravicus in Herink’s coloured

plate (T. 54) do not show an areolate or disrupted center of pileus but in

the black and white reproductions of photographs (Tab. XIII and Tab.

XIV) in his article this character is at least as evident as in Reid’s plate of

B. leonis. 1n addition, Herink in his redescription noted “Revétement...,

Source : MNHN. Paris

ESPLUGAS DE LLOBREGAT 207

finement tomenteux, ..., puis progressivement rompu-aréolé du centre vers la

Moreover, in the same article Herink published a pale form of X.

moravicus - forma palescens.

Scleroderma fuscum (Corda) Fischer, Nat. Pflanzenfam. |: 336, 1899. Fig.

53-56.

The material studied consists of two globose fruitbodies, joined by

their base, and macroscopically they fit the description of Calonge (1983).

Microscopically, it shows olivaceous and globose spores, with reticulate or-

namentation, surrounded by typical hyaline and cyanophilous cells.

It has only been previously recorded once in our country, in Madrid by

Calonge (loc. cit.)

Material examined: Santa Fe del Montseny (Barcelona), in humus of

Fagus sylvatica and Pinus sp., 17/X/89, leg. C. Lucchini. H.AH 11867.

Fig. 55-56. Scleroderma fuscum (Corda) Fischer. 55-56: spores.

ACKNOWLEDGEMENTS

We acknowledge the Excmo. Ayuntamiento de Esplugas de Llobregat and the

Sociedad Micológica de Esplugas by their invitation to take part in the II and III an-

nual mycological stages. Also to Mr. J. Boada, Mr. Morera and rest of the mem-

bers of this Society for their warm reception and attention to all these studies. To

Source : MNHN, Paris

208 G. MORENO et al.

Dr. M. Candusso (Saronno, Italy) for his bibliographical collaboration and to Nikon

(Rego & Cia) for their advice in the photographic section.

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CHYTRIDS IN EGYPT: I - SAPROPHYTIC SPECIES

OF THE CLADOCHYTRIACEAE FROM WATER STREAMS

Samy K.M. HASSAN

Botany Department, Faculty of Science, Minia

University, Minia, Egypt.

ABSTRACT - Eighteen zoosporic, polycentric members of saprophytic Cladochytri-

diaceous fungi belonging to four genera were isolated from water streams in El-Mi-

nia Governorate during autumn, winter and spring of 1987 and 1988 on cellulose-

rich substrata (sterile baits of onion skin and corn husks). These fungal species

flourished and developed within two or three weeks of incubation (21-23°C). Among

the species isolated, seven are recorded for the first time in Egy pt: Cladochytrium tai-

anum Shen & Siang, Megachytrium westonii Sparrow, Nowakowskiella crassa Каг-

ling, N. macrospora Karling, N. pitcairnensis Karling, Septochytrium macrosporum

Karling and S. marylandicum Karling.

RÉSUMÉ - Dix-huit espéces de Cladochytridiacées saprophytes (4 genres) ont été

isolées de riviéres du governorat d'El-Minia, en automne, hiver et printemps 1987 et

1988, sur pièges riches en cellulose (pelures d'oignons, téguments de céré ériles).

Ces champignons se développent en 2 ou 3 semaines d'incubation à 21-23°C. Parmi

ces espèces, 7 sont nouvelles pour l'Egypte: Cladochytrium taianum Shen & Siang,

Megachytrium westonit Sparrow, Nowakowskiella crassa Karling, N. macrospor

Karling, N. pitcairnensis Karling, Septochytrium macrosporum Karling et S.

marylandicum Karling.

INTRODUCTION

Cladochytriaceae Schroeter are characterized by a polycentric

rhizomycelium which consists of fin or relatively coarse tenuous filaments,

intercalary swellings, rhizoids, sporangia and resting spores. In

Cladochytrium Nowakowski and other genera of this family the sporangia

are inoperculate, while in Nowakowskiella Schroeter and Septochytrium

Berdan they are operculate. There are approximatly 36 fairly well known

species of this family.

Since Sparrow's monograph (1960) chytrids are commonly recognized

in the rank of the order Chytridiales (Sparrow, 1973; Batko, 1975; Karling,

1977, 1987; Gupta & Mehrotra, 1989). Barr (1980) studying the

ultrastructure of zoospores of Chytridiales divided this order into two

emended orders Chytridiales and Spizellomycetales. Dogma (1973) had

Proposed the "cladochytrioid alliance" for this group of chytrids.

Source : MNHN, Paris

212 Samy K.M. HASSAN

So far these fungi have received little attention in Egypt. Gaertner

(1954) found three species belonging to this family. Karling (1976), reported

four members in the African soil collections. Recently, Elnaghy et al. (1985

a, b; 1987) identified eleven species belonging to the Cladochytriaceae.

Cellulose-containing substrata were used in this study for isolation and

subculturing the zoosporic fungi belonging to Cladochytriaceae.

MATERIALS AND METHODS

As recommended by Willoughby (1961) and Sparrow (1968), samples

were collected from shallow water where soil is washed by waves near the

banks. Samples were collected from different canals located in El-Minia

Governorate, as shown in Fig. 1, from Deir-Mawas, Mallawi, Abo-Qurgas,

El-Minia, Samalout, Mattai, Beni-Mazar and Maghaga, monthly during

autumn, winter and spring of 1987 and 1988 which are the best seasons for

multiplication of the saprophytic zoosporic fungi (Sparrow, 1960).

Immediately after collection, 20ml aliquots of water samples were incubated

at room temperature (20-23°C), with a cellulose-containing substrate (bits of

sterilized onion skin scales, cellophane, bromegrasse leaves and corn husks)

in sterile 9cm diam. petri dishes. After two or three weaks of incubation, a

very rich growth of chytridiaceous fungi was observed. The developing

zoosporic fungi were isolated by using the simple routine methods of inves-

tigation of zoosporic fungi (10 round small fragments of the baiting

substrata were put into each dish containing water samples) as mentioned by

Batko (1975), then examined by using an optical microscope in a bright field

in fresh stained conditions, at 20 and 40 x objective lens and then drawing

under x 600 and x 800 magnifications with a camera lucida and identified

according to Sparrow (1960), Batko (1975) and Karling (1977). Isolates of

zoosporic fungi were subcultured on the same substrate by using the induc-

tion medium of Mendoza & Prendas (1988). Three times of purifications

were used for each isolated species, then maintained on the same medium at

5*C and subcultured every one month.

RESULTS

Fifty-four times of zoosporic fungal isolates belonging to eighteen

species of cladochytridiaceous fungi were recorded from eight sites as

follows: Maghagha 8, Beni-Mazar 6, Mattai 8, Samalout 11, El-Minia 9,

Abo-Qurqas 4, Mallawi 5 and Der-Mawas 3 species; they comprising 44%,

33%, 44%, 61%, 50%, 22%, 28% and 17% of total isolated species,

respectively. Samalout was the richest site which contains 1l species

representing 61% of total isolated species (11 out of 18). However, the

poorest site was Der-Mawas containing 3 species comprising 17% of total

number of isolated species.

Nowakowskiella ramosa was the most frequent species in all sites. N.

hemisphaerospora was observed in the present study as the second most

frequent cladochytridiaceous fungus recorded in all sites except Der-Mawas.

Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : 1 213

Samalout

[e] sampling sites

Z Матт сапа!

x é —

30° 30° 30° 30 00

Fig. 1 - Map showing the location of samples collected in El-Minia Governorate.

A) Species recorded for the first time in Egypt:

1 - Cladochytrium taianum Shen & Siang 1948 (Plate 1).

Rhizomycelium —intramatrical and extramatrical, 0.5-3um wide,

branched, often anastomosing, with numerous fusiform swellings 7-10 x

Source : MNHN, Paris

214 Samy R.M. HASSAN

4-8um; zoosporangia extramatrical, terminal or intercalary, inoperculate, va-

riable in shape and size, globose, subglobose or ovoid, 21-40um diam.;

zoospores hyaline, globose to subglobose, Ilum diam., containing a single

refractive body, бит diam., posteriorly uniflagellate; resting spores terminal

or intercalary, mostly globose, 17-204m diam., with a single central oil glo-

bule, 8um diam., wall smooth, about 0.8um thick.

The Egyptian isolate of C. raianum matches the original description in

all respects except the resting spores. They appear with thicker wall and

intercalary occurrence only.

2 - Nowakowskiella crassa Karling 1949 (Plate 2).

Rhizoidal system hyaline, profusely branched, usually wide and thick-

walled, with numerous nonseptate, subglobose, fusiform swellings, 9-22 x

6-I2um; zoosporangia intramatrical ovoid, terminal, smooth, globose or

oval, 22-45 x 16-40um, operculum 6-94m diam.; zoospores globose to

subglobose, 5-5.5um diam., with a single refractive globule l.5um diam.,

with a posterior flagellum; resting spores hyaline, smooth, globose, oval,

20-28 x 16-26um.

The present values of N. crassa closely fit the original ones. Resting

spores vvere observed for the first time.

3 - Nowakowskiella pitcairnensis Karling 1968 (Plate 3).

Rhizomycelium profuse, richly branched, tenuous portions 1.5-3.9um

diam., bearing numerous non-septate swellings, narrowly ovoid, fusiform,

8-15 x 4-Ilum. Zoosporangia usually terminal, sometimes intercalary, non-

apophysate, hyaline, smooth, globose, ovoid, 13-28 x 9-17um; zoospores,

globose, 3-3.3um diam., with a minute hyaline refractive globule. Resting

spores usually abundant, formed from intercalary swelling, fairly thick-

walled, light brown filled with coarse granules, smooth, almost globose,

9-10um diam.

The Egyptian isolate of N. pitcairnensis matches the original description

by Karling (1968).

4 - Nowakowskiella macrospora Karling 1945 (Plate 4).

Rhizomycelium profuse, richly-branched, fairly coarse, tenuous por-

tions 1.6-62um diam.; sporangia extramatrical, terminal or intercalary,

hyaline, smooth, usually apophysate, often slightly flattened, globose, oval,

22-32 x 16-24um. Zoospores slowly oozing out and forming a globular mass

at the orifice, amoeboid shape and mostly globose 10.5um diam., with a lar-

ge (3-4.6um), somewhat disc-shaped refractive globule, and numerous minu-

te granules at the posterior end; flagellum 34-42m long; resting spores

globose, 8.5-9.2um diam., functioning as germinating prosporangia.

Except for the smaller size of resting spores, all other features of the

Egyptian isolate match those of the species.

5 - Megachytrium westonii Sparrow 1933 (Plate 5).

Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : I 215

Thallus at first entirely extramatrical, later also intramatrical consisting

of a profusely branched extensive tubular undulating hypha-like vegetative

system, whose main axes are up to 6-8.5um wide, the smaller ones about

2.5um, and of numerous terminal or intercalary swelling; sporangia globose

or subglobose, with or without a single short exit tube, varing greatly in

size, usually about 27-39 x 20-34um, sometimes apophysate, rarely

proliferating, wall slightly thick, smooth, colourless; zoospores globose, Sum

diam., with a small colourless globule and a 354m long flagellum; resting

spores broadly ovoid, 20 x 18um, with a thick smooth wall, filled with glo-

bules.

6 - Septochytrium macrosporum Karling 1942 (Plate 6).

Thallus predominantly polycentric, occasionally ^ monocentric.

Rhizomycelium usually wide, thick-walled, richly branched, rarely septate,

lenuous apart from 2-13um wide rhizoids; rhizoids numerous and richly

branched; intercalary swellings broadly or narrowly spindle, elongate,

fusiform and irregular. Zoosporangia terminal or intercalary, delimited by

septa, globose, pyriform and sometimes irregular, 25-70 x 24-4lum, hyaline

and smooth. Zoospores globose up to llum diam., when fully formed,

remaining a few moments in a globular mass at the orifice before swimming

away; intermittently amoeboid. Resting spores intercalary, subglobose,

25-30um diam., with several large refractive globules.

The rhizomycelium and the zoospores of the Egyptian isolate exactly

natch the original description.

7 - Septochytrium marylandicum Karling 1951 (Plate 7).

Rhizomycelium profuse, much branched, rarely septate up to Sym

liam., with broadly or narrowly fusiform or variously shaped intercalary

swellings, bearing slender rhizoids. Sporangia predominantly oval, broadly

pyriform, sometimes globose 18-45 x 16-42um, rarely apophysate, usually

with the long axis perpendicular to the rhizoidal axis; discharge tube long,

curved, coiled or contorted, simple or branched, occasionally with

operculum slightly sunken 5-13um diam.; zoospores globose, 4.5-5 um diam.,

with numerous minute refractive granules and up to 32um long flagellum;

resting spores usually terminal, globose up to 36zm diam., with surround

hairs, slightly thick-walled, with numerous small oil bodies.

The Egyptian isolate of S. marylandicum closely matches the original

description. Resting spores are here recorded for the first time.

B) Species recorded several times in the present study:

| - Cladochytrium tenue Nowakowski 1876.

[recorded 2 times, representing 3.7% (2 out of 54)]

2- Cladochytrium aurantiacum Richards 1956.

[recorded 4 times, representing 7.4% (4 out of 54)].

3- Cladochytrium crassum Hillegas 1941.

[recorded 2 times, representing 3.7% (2 out of 54)].

Source : MNHN, Paris

216 Samy K.M. HASSAN

4 - Cladochytrium hyalinum Berdan 1941.

[recorded 5 times, epresenting 9.3% (5 ош оѓ 54)].

5 - Nowakowskiella delia Whiffen 1943.

[recorded 3 times, representing 5.6% (3 out of 54)].

6 - Nowakowskiella elongata Karling 1944.

[recorded 5 times, representing 9.3% (5 out of 54)].

7 - Nowakowskiella granulata Karling 1944.

[recorded 4 times, representing 7.4% (4 out of 54)].

8 - Nowakowskiella hemisphaerospora Shanor 1942.

[recorded 7 times, representing 13% (7 out of 54)].

9 - Nowakowskiella multispora Karling 1964.

[recorded 2 times, representing 3.7% (2 out of 54)].

10 - Nowakowskiella ramosa Butler 1907.

[recorded 8 times, representing 14.876 (8 out of 54)].

11 - Septochytrium variabile Berdan. 1939.

[recorded 5 times, representing 9.396 (5 out of 54)].

DISCUSSION

The Cladochytriaceae now comprise 33 species in 7 genera all over the

world. In the present study, 18 species belonging to four genera

(Nowakowskiella 9, Cladochytrium 5, Septochytrium 3, Megachytrium 1) have

been found. Seven were observed here for the first time in Egypt.

Cladochytrium tenue was recorded in Egypt for the second time.

Nowakowskiella represents 50% of total number of the species isolated

in this study. Of sixteen species found in different parts of the world (Batko

& Hassan, 1982; Hassan & Batko, 1986), over half are now known from

Egypt. Nowakowskiella ramosa, N. hemisphaerospora and N. macrospora are

the most common and widely distributed species (Sparrow, 1960; Karling,

1968, 1977; Hassan, 1982; Elnaghy et al., 1985b). Karling (1945) clearly

pointed out that in N. macrospora the typical mode of zoospore discharge is

by extrusion of the slightly sunken operculum. This agrees exactly with my

own observations. Although Shen & Siang (1948) mentioned an operculum,

they did not indicate whether it is a true operculum or an endo-operculum.

Most Nowakowskiella species are exo-operculate except for N. granulata and

N. macrospora which are endo-operculate. Zoosporangia of N. multispora are

endo- and exo-operculate.

Twelve species of Cladochytrium have been recorded from all over the

world (Karling, 1977; Batko & Hassan, 1986). Over 40% of the known

species are reported in this study. C. tenue and C. hyalinum are the most

common and widely distributed in water (Sparrow, 1960; Batko, 1975;

Hassan, 1982). Striking features of C. hyalinum are large oil globule in the

zoospores and a strong tendency for extramatrical development. On

germination, zoospores of C. tenue produce one or two delicate filaments,

Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : I 217

which after a few days become elongate and irregularly branched. Resting

spores were observed in C. crassum after a long time, as described by

Karling (1945) and Elnaghy et al. (1987). C. taiamum is distinguished from

C. tenue by larger zoospores.

Septochytrium Berdan represents 16.7% of the total number of species

isolated in this investigation (3 out of 18). At present, five species are

known, three of them were found in this study. Willoughby (1964) found

that a part of zoospores of S. marylandicum develop into a primary

zoosporangium and rhizoidal axes. A similar sequence of events has also

been observed occasionally in S. macrosporum. S. macrosporum differs from

S. marylandicum by its smaller zoospores (4.5-Sum and 10.8-11.24m diam.,

respectively).

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Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : I 219

Plate 1, Figs. 1-8: Cladochytium taianum. 1: Zoospores with refractive globule; 2-6:

Young terminal and intercalary zoosporangia; 7: Portion of rhizomycelium

showing young sporangia and spindle organs; 8: Resting spores with

rhizomycelium.

Source : MNHN, Paris

220 Samy K.M. HASSAN

20pm

Plate 2, Figs. 1-15: Nowakowskiella crassa. 1: Zoospores with refractive globule; 2

Portion of rhizomycelium showing spindle organs, elongate sporangium and

tapering rhizoidal ends; 3: Zoosporangial germination; 4-10: Different shapes

of young sporangia; 11, 12: Empty zoosporangia; 13-15: Resting spores with

various shapes.

Source : MNHN. Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : 1 221

Plate 3, Figs. 1-5: Nowakowskiella pitcairnensis. 1: Zoospores with refractive globu-

le; 2, 3: Extensive growth of rhizomycelium showing numerous spindle organs

and tenuous rhizoidal system; 4: Portion of rhizomycelium with young

zoosporangia; 5: Resting spores with rhizomycelium.

Source : MNHN. Paris

222 Samy K.M. HASSAN

Plate 4, Figs. 1-4: Nowakowskiella macrospora. |: Differently shaped zoospores; 2:

Portion of polycentric rhizomycelium with young zoosporangia; 3: Part of

rhizomycelium showing operculate sporangium and rhizoidal system; 4:

Another portion of rhizomycelium with young sporangium and germinating

resting spore.

Source : MNHN. Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : 1 223

Plate 5, Figs. 1-3: Megachytrium westonii. 1: Zoospores with accentric refractive glo-

bule; 2: Portion of polycentric rhizomycelium showing terminal and intercalary

zoosporangia and swelling bodies; 3: Extensive growth of rhizomycelium with

young and mature sporangia and resting spores.

Source : MNHN, Paris

224 Samy K.M. HASSAN

Plate 6, Figs. 1-3: Sepochytrium macrosporum. 1: Zoospores; 2: Extensive growth of

rhizomycelium showing different shapes of zoosporangia, spindle organs and

some septa; 3: Operculate sporangium.

Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : 1

225

20pm

Plate 7, Figs. 1-16: Septochytrium marylandicum. 1: Zoospores; 2: Portion of

thizomycelium with spindle organs and tenuous rhizoidal system; 3, 4, 6-8,

13-15: Variously shaped young and mature terminal sporangia;

Rhizomycelium with intercalary mature sporangium and terminal young on

9-12: Four elongate zoosporangia with 1-2 exit tubes; 16: Slightly thick-walled

resting spore with hairs.

Source : MNHN. Paris

Pruit

тэй Не»

Cryptogamie, Mycol. 1991, 12 (3): 227-240 227

CHYTRIDS IN EGYPT:

II - NEW RECORDS OF SPECIES OF

ENTOPHLYCTIDACEAE

Samy K.M. HASSAN

Botany Department, Faculty of Science, Minia

University, Minia, Egypt.

ABSTRACT - Eight newly recorded species of the Entophlyctidaceae, Endochytrium

digitatum Karling, Entophlyctis crenata Karling, E. vaucheriae Fischer, Diplophlyctis

nephrochytrioides Karling, D. sexualis Haskins, D. verrucosa Kobayaschi, Nephrochy-

trium amazonense Karling and N. appendiculatum Karling were isolated and identi-

fied from water samples collected from different water streams localed in El-Minia

Governorate. Isolation and subculturing of these fungi were performed by using

sterile cellulosic baits.

RÉSUMÉ - Huit espèces d'Entophlyctidacées nouvelles pour l'Egypte: Endochytrium.

digitatum Karling, Entophlyctis crenata Karling, E. vaucheriae Fischer, Diplophtlyctis

nephrochytrioides Karling, D. sexualis Haskins, D. verrucosa Kobayaschi,

Nephrochytrium amazonense Karling et N. appendiculatum Karling, ont été isolées et

identifiées partir d'échantillons d'eau récoltés dans différentes rivières du

governorat d'El-Minia. Ces champignons ont été isolés à l'aide de pièges cellulosiques

stériles.

INTRODUCTION

Family Entophlyctidaceae are characterized by monocentric intra-

matrical thallus, composed of extramatrical zoospore cyst, intramatrical

sporangia or resting spores and branched rhizoids. Whiffen (1944) divided

this family into two subfamilies, Entophlyctoideae and Diplophlyctoideae,

on the basis of whether the zoosporangia and resting spores develop directly

from the germ tube or later from an apophysis. In the zoospores of

Entophlyctis some authors, such as Koch (1968) and Salkin (1970) observed

variations in spore size, number and size of lipid bodies.

In Egypt, there is no previous record or evidence of the occurrence of

Entophlyctidaceae. The present studies were undertaken to enlarge our

knowledge of the Egyptian zoosporic fungi. In this paper 8 species belonging

to 4 genera in the Entophlyctidaceae are reported, isolated and identified

from water streams in El-Minia Governorate.

Source : MNHN, Paris

228 Samy K.M. HASSAN

MATERIALS AND METHODS

The materials and methods are the same as in the previous paper

(Hassan, 1991).

RESULTS

All the strains isolated in the present study were recorded once and

subcultured on the different cellulose substrates as shown in the materials

and methods (Hassan, 1991).

A) Subfamily Entophlyctidioideae:

1 - Endochytrium digitatum Karling 1938 (Plate 1).

Thalli numerous, intramatrical, monocentric, eucarpic. Zoosporangia

hyaline and smooth, elongate and obclavate 21-52 x 15-30um, pyriform

25-140 x 15-53um, obpyriform, irregular or subglobose and lobed, with one,

rarely two simple or branched, curved or straight, tapering exit tubes, 56-98

x 410m; operculum globose or slightly oval, 3-6um diam. Zoospores

hyaline, globose 4.2-5.6um diam., with one refractive globule, posteriorly

uniflagellate, emerging fully formed and singly, and resting in a globular

mass a short while before becoming motile, intermittently amoeboid. This

strain was baited with bromegrasse leaves

The Egyptian isolate of E. digitatum fully matches the original descrip-

tion.

2 - Entophlyctis crenata Karling 1967 (Plate 2).

Sporangia intramatrical, single, subglobose or cylindrical with rounded

ends, 32-98 x 25-70um, terminal or intercalary, separated by cross walls from

the rhizoidal system, with a single short papilla which penetrates the wall of

the substratum, rhizoidal system dichotomously branched, polycenric, the

main axis arising from one end or from opposite ends of the sporangium,

broad and tubular, up to Sum diam. Zoospores subglobose to slightly

ovoid, 4-6um diam., with a single globule and numerous small globules,

posteriorly uniflagellate emerging upon deliquescence of the papilla and

forming a temporary compact motionless mass at the orifice before

assuming motility. Resting spores borne like sporangia, globose, up to

49um diam., with a thickened colourless wall, 1.5-2m thick. This strain was

baited with bromegrasse leaves.

Most features of the Egyptian isolate of E. crenata match the type

except for the resting spores which have a thinner wall and are crenate as in

the original description,

3 - Entophlyctis vaucheriae Fischer 1892 (Plate 3).

Sporangia intramatrical, globose, 27-39um diam., with a beak-like or

narrowly cylindrical apical exit tube more or less prolonged extramatrically,

sporangia smooth, thin-walled and colourless. Rhizoids arising basally from

a delicate central axis or occasionally from two places in the lower part of

Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : II 229

the body, fairly extensive and much branching with tapering ends.

Zoospores globose, 6-7um diam., with a centric or eccentric colourless glo-

bule, a single posterior flagellum, emerging upon deliquescence of the

papilla and remaining in a compact motionless mass at the orifice before

assuming motility, Resting spores globose, up to 34m diam., with slightly

thickened walls, containing numerous oil globules; germinating in the spring

by the swelling of the endospore which bursts the exospore, the former

emerging as a subglobose structure within which the zoospores are

produced. This strain was baited with corn husks.

The Egyptian isolate of E. vaucheriae completely agrees with the origi-

nal description.

B) Sufamily Diplophlyctoideae:

4 - Diplophlyctis nephrochytrioides Karling 1967 (Plate 4).

Asexual monocentric thallus, intramatrical, with branched rhizoidal

system. Sporangia apophysate, hyaline, smooth, globose to subglobose, up

to 34um diam., irregular, ovoid, 24-51 x 18-40um, encysted planospores and

germ tube remain attached to the zoosporangium. Rhizoids arising from a

basal axis, richly branched and extending up to l60um. Zoospores

subglobose 5-6um diam., with a large hyaline refractive globule. Resting

spores globose, 18-2lm diam., with a thick dark brown wall and a large

central globule surrounded by smaller ones; apophysis attached to the cen-

tral rhizoidal axis and bearing rhizoidal filaments at one end. This strain

was baited with gromegrasse leaves.

Except for the slightly bigger zoospores in the Egyptian isolate, other

morphological features match the original description.

5 - Diplophlyctis sexualis Haskins 1950 (Plate 5).

Thalli monocentric, usually intramatrical, consisting of a sporangium

or resting spore subtended by an apophysis from which a rather thick-

walled, branched rhizoidal system arises. Sporangia variously shaped,

hyaline, smooth, up to 30um diam.; exit tubes one or two, short and broad,

dehiscing by deliquescence or by softening of the tips forming an evanescent

gelatinous plug, below which is the endo-operculum. Zoospores, 5-5.8um

diam., each with a single refractive globule and a posterior, up to 35um long

flagellum, remaining some time motionless after discharge. Rhizoidal system

usually arising from the basal half of the apophysis, stout, extensive and

branched. Resting spores globose or slightly oval, 18-22um diam., contents

coarse and globular. This fungus develops well on various cellulolytic

substrates, especially cellophane.

Zoospores and resting spores exactly match the original description;

sporangia in the Egyptian isolate were slightly smaller than in the original

isolate.

6 - Diplophlyctis verrucosa Kobayashi & Ookubo 1954 (Plate 6).

Zoosporangia intramatrical, depressed globose, ovoid or ellipsoidal,

thin-walled, hyaline, smooth, 27-42 x 16-33jm, with a single apical, basal or

Source - MNHN. Paris

230 Samy K.M. HASSAN

lateral, cylindrical, straight or somewhat curved, 33-87um long exit tube.

Zoospores numerous, hyaline, globose or subglobose, 4.8-6um diam., with a

single refractive globule and a dense cluster of compact granules in one side,

with a posterior flagellum; apophysis small; rhizoids basally or bilaterally

attached, dichotomously branched. Resting spores globose, up to 28um

diam. with a thick pale yellow wall, containing numerous oil globules;

resting spores smooth-walled. This fungus was baited with bromegrasse

leaves.

The Egyptian strain of D. verrucosa matches the original description

except for the absence of roughening of resting spores.

7 - Nephrochytrium amazonense Karling 1944 (Plate 7).

Thallus monocentric, usually intramatrical, consisting of a sporangium

or resting spore, subtended by an apophysis from which an extensive, richly

branched rhizoidal system arises. Sporangia hyaline, smooth, pyriform,

30-120 x 13-184m, or subglobose, 18-43um diam., exit tube 10-75um long;

tip of the tube swelling and softening to form a plug of hyaline material; a

shallow saucer-shaped operculum subsequently developed inside the exit

tube. Zoospores emerging when fully developed and forming a globular

mass at the orifice before dispersing; zoospores globose, 6-6.5um diam., with

a large refractive globule, posterior flagellum up to 404m long. Apophysis

oval, flattened, obpyriform, 5-26 x 4-12um. Rhizoidal system arising from

the base of the apophysis, richly branched, up to 156um long. Resting

spores oval, somewhat bean-shaped, 29-42 x 25-35um, subglobose, 24-28um

diam., and sometime irregular, smooth-walled, functioning as prosporangia

on germination. This fungus was baited with onion skin scales.

The Egyptian isolate matches the original description.

8 - Nephrochytrium appendiculatum Karling 1938 (Plate 8).

Zoosporangia numerous, intramatrical, hyaline, smooth, subglobose,

flattened, dispersed, somewhat kidney-shaped, 33-68 x 8-20um, with 1-2 exit

papillae or tubes of varying length. Zoospores hyaline, globose, 3.5-4.2um

diam., with a large clear refractive globule; posterior flagellum up to 33um

long. Apophysis elongate, transverse, usually spindle-shaped, 15-21 x

6-l0um; rhizoids arising from the end of the apophysis. Resting spores

smooth, globose, flattened, occasionally obpyriform, 9-18 x 6-9um, thick-

walled, containing some refractive globules. This fungus was baited with

onion skin scales.

The Egyptian isolate perfectly matches the original description.

DISCUSSION

Eight species belonging to four genera of the Entophlyctidaceae were

isolated and identified. All were recorded for the first time in Egypt.

j The subfamily Entophlyctidoideae includes the genera Entophlyctis

Fischer which comprises 13 species and Endochytrium Sparrow (7 species).

Two species of Entophlyctis, E. crenata, E. vaucheriae and one of

Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : II 231

Endochytrium, E. digitatum were recorded in the present study. —Karling

(1977) had observed resting spores in E. cremata and E. vaucheriae and they

were also found here. Endochytrium is the operculate counterpart of

Entophlyctis; its species are weakly parasitic in green algae or saprophytic in

cellulosic substrata and eggs or cysts of microscopic animals.

The subfamily Diplophlyctidoideae includes the genera Diplophlyctis

Schroeter (7), Nephrochytrium Karling (6) and Rhizosiphon Scherffel (3

species). The thallus is monocentric and eucarpic. The enlargment of the

germ tube usually becomes an apophysis, which functions as a

prosporangium in most species of genera Diplophlyctis and Nephrochytrium

(Karling, 1977). Dogma (1973) proposed two phylogenetically related groups

of chytrids, the “rhizophlyctoidal alliance” and the “cladochytrioidal allian-

ce”. Because of the comparable degree of natural characters, Hassan (1983)

suggested a third one, the “diplophlyctoidal alliance”. The core of this allian-

ce may be delimited by the complex of genera Diplophlyctis and

Nephrochytrium.

Diplophlyctis had been characterized as intramatrical, with inoperculate

sporangia, but Karling (1977) pointed out that Diplophlyctis sexualis appears

to be endo-operculate. My observations of D. sexualis confirm this. The ob-

servation by Haskins (1950), Sparrow (1960) and Karling (1977) that

zoosporangium and apophysis develop from a branch of the germ tube in

D. sexualis was also confirmed in the present study.

Ookubo (1954) observed a fine ornamentation of the resting spore wall

in Diplophlyctis verrucosa. But, Karling (1977) found that D. verrucosa

isolated in Iceland was much more regular in shape and growth density, and

also the sporangia and resting spores were generally smaller. D. verrucosa

can parasitize Chara; in Iceland, the fungus was found to be saprophytic.

The Egyptian isolate in all features matched that from Iceland.

Nephrochytrium has been created by Karling (1938) for a new

saprophytic operculate member of Chytridiales occurring on dead or

moribund cells of Chara and Nitella. N. appendiculatum was the first species

described. Two strains of this genus were recorded in the present study, N.

amazonense and N. appendiculatum. For both species, Karling (1977)

illustrated the terminal branches running out to fine filaments and points.

Moreover, he added that the resting spores in these two species are borne in

the same manner as the sporangium. All these features were observed in the

two Egyptian isolates as well.

REFERENCES

DOGMA LJ. jr, 1973 - Developmental and taxonomic studies on rhizophlyctoid

fungi, Chytridiales. I. Dehiscence mechanism and generic concepts. Nova

Hedwigia 24: 393-411.

HASKINS R.H., 1950 - Studies on the lower Chytridiales. II. Endo-operculation

and sexuality in the genus Diplophlyctis. Mycologia 42: 172-778.

HASSAN S.K.M., 1983 - Two new chytrids from the environments of Warsaw.

Nova Hedwigia 38: 727-740.

Source : MNHN, Paris

232 Samy K.M. HASSAN

HASSAN S.K.M., 199] - Chytrids in Egypt: | - Saprophytic species of the

Cladochytriaceae from water streams. Cryptogamie, Mycol. 12: 211-225.

KARLING JS. 1938 - A new chytrid genus. Nephrochytrium. Amer. J. Bot. 25:

211-215.

KARLING J.S., 1977 - Chytridiomycetarum Iconographia. Vaduz, J. Cramer, 414

KOCH W.J., 1968 - Studies of the motile cells of chytrids. IV. Planonts in the

experimental taxonomy of aquatic Phycomycetes. J. Elisha Mitchell Sci. Soc.

84: 69-83.

OORUBO M., 1954 - Studies on the aquatic fungi in the moors and ponds of

Hakkoda. Nagaoa 4: 48-60.

SALKIN I.F., 1970 - Allochytridium expandens gen. and sp. n: growth and

morphology in continuous culture. Amer. J. Bot. 57: 649-658.

SPARROW F.K. jr., 1960 - The aquatic Phycomycetes. 2nd ed. Univ. Michigan

Press, Ann Arbor, Mich., 1187 p.

WHIFFEN A.J., 1944 - A discussion of taxonomic criteria in the Chytridiales.

Farlowia 1: 583-597.

Source : MNHN. Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : II 233

Plate 1, Figs. 1-13: Endochytrium digitatum. 1: Zoospores; 2-5, 8, 12, 13: Differently

shaped zoosporangia: 6: Elongate zoosporangium with curved exit tube; 7:

Operculate sporangium with short lateral papilla; 9, 11: Intercalary

zoosporangia; 10: Subglobose sporangium with long exit tube.

Source : MNHN, Paris

234 Samy K.M. HASSAN

Plate 2, Figs. 1-6: Entophlyctis crenata. 1: Zoospores with refractive globule; 2:

Intercalary young sporangia; 3: Long cylindrical sporangium with two short

papillae; Mature operculate sporangium; 5: Terminal subglobose

zoosporangia; 6: Mature resting sporangium with refractive globules.

Source : MNHN. Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : II 235

Plate 3, Figs. 1-12: Entophlyctis vaucheriae. 1: Zoospores with refractive globule;

Differently shaped young vacuolate zoosporangia with short tapering

rhizoidal axes; 8, 9: Two young sporangia with rhizoidal axis; 10: Sporangium

with long exit tube; 11: Operculate zoosporangium; 12: Thick-walled resting

spores, one germinating.

Source : MNHN, Paris

236 Samy K.M. HASSAN

Plate 4, Figs. 1-14: Diplophlyctis nephrochytrioides. 1: Zoospores with refractive glo-

bule; 2, 3: Young zoosporangia; 4, 5: Mature operculate sporangia; 6-11:

Different shapes of apophysate zoosporangia with branched rhizoidal axes; 12,

13: Mature sporangia with germ tube. 14: Resting spores with thick dark-

brown wall and central large globule.

Source : MNHN. Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : II 237

200m

Plate 5, Figs. 1-21: Diplophlyctis sexualis. Zoospores; 2-10: Terminal and

intercalary apophysate zoosporangia; 11: Mature operculate and young

papillate sporangia; 12-19: Empty and young variously shaped sporangia with

branched rhizoidal axes; 20, 21: Resting spores of different shapes.

Source : MNHN. Paris

238 Samy K.M. HASSAN

ЕТ

20pm

Plate 6, Figs 1-11: Diplophlyctis verrucosa. 1: Zoospores with one large and

numerous small refractive globules; 2-4: Three young sporangia with long exit

tubes and branched rhizoidal axes; 5-8: Young ellipsoidal sporangia; 9: Mature

sporangium; 10: Germinating resting spore; 11: Spherical resting spore.

Source : MNHN, Paris

CHYTRIDS IN EGYPT : II 239

Plate 7, Figs 1-25: Nephrochytrium amazonense. 1: Zoospores; 2-6: — Young

apophysate sporangia: 7-14, 18-22: Mature differently shaped apophysate

sporangia; 15, 16: Young and empty apophysate sporangia; 17: Operculate

zoosporangium; 23, 24: Differently shaped resting spores; 25: Germinating

resting spore.

Source : MNHN, Paris

240 Samy R.M. HASSAN

20um

Plate 8, Figs. 1-29: Nephrochytrium appendiculatum. 1: Zoospores; 2-5: Operculate

zoosporangia; 6: Young sporangium with two exit tubes; 7-12: Differently

shaped mature zoosporangia; 13-17, 19-25: Apophysate sporangia; 18: Empty

globose sporangium attached with young thallus; 26, 27: Germinating

sporangia; 28, 29: Thick-walled resting spores.

Source : MNHN, Paris

Cryptogamie, Mycol. 1991, 12 (3): 241-242 241

ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

RIVA A., 1988 - Tricholoma (Fr.) Staude. Fungi Europaei n°3. Italie, 21047

Saronno, Libreria editrice Giovanna Biella, 618 Pp. fig, 24 phot. col.,

90 pl. col. (texte en italien; certaines indications et de brèves descrip-

tions en anglais et en allemand).

Le genre Tricholoma, tel qu'il est actuellement envisagé, ne correspond qu'à

une partie du vaste groupe délimité sous cette appellation par E.M. Fries. ll reste

néanmoins important et, pour l'Europe occidentale seule, comprend environ 70.

espèces auxquelles est consacré le troisième volume de la série - toujours de très hau-

te qualité - des Fungi Europaei.

Dans des généralités étayées par la reproduction de nombreux documents,

l'Auteur rend compte avec minutie des différentes conceptions qu'ont eues des

mycologues comme Fries bien évidemment, mais aussi Quélet, ,vis-à-vis des

tricholomes et de leur classification. La deuxième partie de l'ouvrage propose des

notes bibliographiques et taxinomiques sur les onze genres: Zyophyllum, Melanoleuca,

Rhodopaxillus, Rhodocybe..., séparés du genre Tricholoma de 1881 jusqu'en 1975.

Pour chacun de ces genres, une planche en couleurs illustre les caractéristiques d'une

espèce prise comme exemple.

Avec une iconographie remarquable réalisée par Aurel Dermek et Ernesto

Rebaudengo, accompagnée d’une description succincte des basidiocarpes, la troisième

partie du travail, et la plus longue aussi, traite des espèces. Les particularités des

tricholomes sont examinees en detail et des clés d'identification établies tandis qu'est

présentée la classification adoptée dans l'ouvrage et inspirée par celle de Marcel Bon.

Le lecteur appréciera les analyses descriptives comme les informations multiples

et précises dont il disposera grâce à cette monographie qui lui permettra de mieux

connaitre ces champignons souvent répandus, mais souvent aussi difficiles à identi-

fier exactement. Ce sera également l'occasion pour l'utilisateur de comparer - notam-

ment au point de vue nomenclatural - cette étude avec d'autres sources documentai-

res, assez rares il vrai, concernant les Tricholomes.

J. Perreau

CANDUSSO M. & LANZONI G., 1990 - Lepiota s.l. Fungi Europaei n° 4.

Italie, 21047 Saronno, Libreria editrice Giovanna Biella, 744p., 133 fig.,

80 pl. col. (texte en italien; introduction et clé traduites en anglais).

Les champignons connus sous le nom général de lépiotes font l'objet de cette.

monographie abondamment illustrée. Plus précisément, y sont étudiés les

représentants européens non seulement du genre Lepiota au sens strict mais

également ceux des genres — Melanophyllum, — Cystolepiota, — Chamaemyces,

Leucoagaricus, Leucocoprinus et Macrolepiota. L'ensemble réunit ainsi prés de 200.

taxons dont quelques-uns sont décrits comme nouveaux.

La majeure partie de l'ouvrage se rapporte à l'analyse des espéces classées selon

les genres et leurs subdivisions présentées au préalable dans des clés principalement

basées sur la couleur des sporées et les caractéristiques sporales. Pour chaque espéce,

on trouve donc: noms d'auteurs de la combinaison, synonymies, références

iconographiques, diagnose originale, énumération des caractères macro- et microsco-

piques, notes sur l'habitat, observations diverses et une planche de dessins au trait

détaillant la morphologie des éléments de l'hyménium et du revêtement piléique.

Source : MNHN. Paris

242 ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

Toutes ces indications sont complétées par de superbes planches en couleurs dues

aux talents respectifs d'Aurel Dermek et d’Ernesto Rebaudengo dont les oeuvres

iconographiques consacrées aux champignons sont célèbres par leur beauté et leur

vérité.

Bien évidemment pourvue des indispensables index, la monographie expose les

traits distinctifs devant être observés chez les lépiotes; elle retrace aussi l'histoire

taxinomique du groupe et évoque même les toutes premières mentions de ces champi-

gnons alors que la Mycologie en était encore à ses balbutiements.

Les mycologues qui s'intéressent aux Agaricales se devront d'enrichir leur do-

cumentation avec ce livre qui leur apportera d'utiles données de comparaison avec

d'autres travaux sur le sujet; peut-étre méme seront-ils, gráce à lui, tentés par l'étude

des lépiotes si nombreuses sous d'autres climats, par exemple tropicaux.

J. Perreau

Gary G. SAMUELS and collaborators, 1990 - Collaboration toward a

mycobiota of Indonesia: Hypocreales, Synnematous Hyphomycetes,

Aphyllophorales. Memoirs of the New York Botanical Garden, vol. 59,

180 p.

Ce fascicule contient les résultats d'un inventaire préliminaire de la mycoflore

d'Indonésie, effectué à partir de collectes effectuées en forêt tropicale du Sulawesi

Nord et d'échantillons d'herbiers locaux (en particulier du Jardin botanique de

Bogor) ou antérieurement collectés dans la région.

Un premier article trés volumineux (100 pages), traite des Hypocréales (G.J.

Samuels, Y. Doi & C.T. Rogerson). Soixante quinze espèces dont 7 tétéomorphes, un

anamorphe et un nom nouveaux sont décrits ou redécrits dans neuf genres et inclus

dans des clefs. Les descriptions reposent sur du matériel collecté sur place mais on

trouve aussi des redescriptions d'espèces décrites en Indonésie par Hennings, Hohnel,

Libert ou Penzig et Saccardo. Les nouvelles espèces Hypocrea sulawesensis, H.

conispora, Hypomyces sibirinae (anamorphe Sibirina variosperma), Nectria

macrarenula, N. macrochaetopsinae, N. macrojungneri, N. balansae et N. viliuscula

sont proposées.

L'article sur les Hyphomycétes corémiés (46 pages) est rédigé par K. Seifert. il

est basé principalement sur des échantillons d'herbier détenus au Jardin Botanique

de Bogor et inclut les espèces décrites par Penzig et Saccardo. Il comporte 56 espèces

dont deux nouvelles (Cornutostilbe medusae et Stilbella pseudobambusae), un nou-

veau genre Cornutostilbe ct une nouvelle combinaison: Podosporium beccarianum.

Comme pour les Hypocréales de l'article précédent, on trouve des clefs

dichotomiques et synoptiques des taxons.

Trente huit espèces, dont une nouvelle (Rigidoporus pendulus) réparties dans

29 genres d’Aphyllophorales ont été identifiées à partir de récoltes locales, décrites

par L. Ryvarden et annotées en référence avec les Polypores de l'Est Africain, Des

clefs dichotomiques sont également proposées dans cet article d'une dizaine de pages.

Sept espèces de Phragmobasidiomycétes réparties dans six genres et sept

espèces de Myxomycètes sont enfin rapportées dans des listes proposées respec-

tivement par B. Lowry & M.L. Farr.

Commission paritaire n* 58611

Dépôt légal n» 15714 - Imprimerie de Montligeon

Sortie des presses le 20 septembre 1991

Imprimé en France

Éditeur : A.D.A.C. (Association des Amis des Cryptogames)

Président : R. Baudoin; Secrétaire D. Lamy

Trésorier : J. Dupont; Directeur deja publication : H. Causse

Source : MNHN, Paris

CRYPTOGAMIE — MYCOLOGIE

BUREAU DE RÉDACTION

MM. DURRIEUG., pour les articles traitant d'Ecologie et de Phytopathologie

Laboratoire de Botanique, Faculté des Sciences,

Allées Jules Guesde, 31000 Toulouse (France).

JOLY P., pour les articles traitant de Systématique

Laboratoire de Cryptogamie, Muséum National d'Histoire Naturelle

12, rue de Buffon, 75005 Paris (France).

MANACHERE G., pour les articles traitant de Physiologie

Laboratoire de Mycologie, Université de Lyon I,

43, Bd du 11 Novembre 1918, 69622 Villeurbanne Cedex (France).

Mmes ZICKLER D., pour les articles traitant de Cytologie

Laboratoire de Génétique, Université de Paris Sud,

Bát. 400, Centre d'Orsay, 91405 Orsay (France).

ROQUEBERT M.F., s’occupera des autres spécialités,

Laboratoire de Cryptogamie, Muséum National d'Histoire Naturelle

12, rue Buffon, 75005 Paris (France).

COMITÉ DE LECTURE

BOIDIN J., Lyon (France) MONTANT Ch., Toulouse (France)

CHEVAUGEON J., Orsay (France) MOREAU Cl., Brest (France)

GAMS W., Baarn (Hollande) PEGLER D.N., Kew (Grande-Bretagne)

HENNEBERT G., Louvain-la-Neuve SUTTON B., Kew (Grande-Bretagne)

(Belgique) TURIAN G., Genève (Suisse)

LACOSTE L., Paris (France)

Les manuscrits doivent être adressés (en 2 exemplaires) directement à

un membre du Bureau de Rédaction, choisi pour sa spécialité. Le Bureau

peut demander l'avis d'un lecteur choisi pour sa spécialité, méme s'il n'ap-

partient pas au Comité de lecture.

Bien qu'étant avant tout une revue de langue francaise, les articles

rédigés en Anglais, Allemand et Espagnol sont acceptés.

Les recommandations aux auteurs sont publiées dans le ler fascicule de

chaque tome.

Source : MNHN, Paris

ABONNEMENTS A CRYPTOGAMIE

Tome 13, 1992

CRYPTOGAMIE comprend trois Sections:

Algologie, Bryologie-Lichènologic, Mycologie.

Abonnement à l'unc ou l'autre Section pour 1992:

France .... (326 F ht) 332,85 F ttc

Étranger . ME ro

Abonnement aux 3 Sections pour 1992:

France .... (918 F ht) 93728 F ue

tranger . -.. 1000,00 F

Les anciens: tomes et fascicules séparés de la REVUE DE MYCOLOGIE et de

CRYPTOGAMIE-MYCOLOGIE sont toujours disponibles.

MÉMOIRES HORS SÉRIE

NO 2 (1942). Les matières colorantes des champignons, раг 1.

Pastac. 88 pages : 15 F.

NO 3 (1943). Les constituants de la membrane chez les champi-

gnons, par R. Ulrich. 44 pages: 15 Р.

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NO 9 (1967). Table des Matiéres (1936-1965), 85 pages : 20 F. —

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FLORE MYCOLOGIQUE DE MADAGASCAR ET DÉPENDANCES

publiée sous la direction de M. Roger HEIM

Tome 1. Les Lactario-Russulés, par Roger Heim (1938) (épuisé).

Tome Il. ER DANA par Henri Romagnesi (1941). 164 pages,

.: 90 F.

Tome III. Les 1 Georges Métrod (1949). 144 pages,

ne а étrod (1949). 144 pages,

Tome IV. Les Discomycétes de Madagascar , par Marcelle Le Gal

(1953). 465 pago DES ЗОВ.

Tome V. Les Urédinées, par Gilbert Bouriquet et J.P, Bassino

(1965). 180 pages, 97 fig., 4 pl. hors-texte : 90 F. G

Reglements :

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