CRYPTOGAMIE

MYCOLOGIE

TOME 18 FASCICULE 3 1997

CONTENTS

J. MOUCHACCA — Francis BUGNICOURT (1907-1991) ..................... 173

R. COURTECUISSE — Red List of threatened fungi in Nord-Pas-de-Calais

region (Northern France)

C. DECOCK & L. RYVARDEN Phellinus anchienatus (Basidiomycetes,

Aphyllophorales) sp.nov. from Brazil... oaeee isise naaede nennen 221

A. ORTEGA, A. BIDAUD & R. MAHIQUES — Contribucion to mol:

genus Cortinarius in peninsular Spain. Part II. 227

C. ILLANA, G. MORENO, A. CASTILLO & J. R. GARCIA — Myxomycetes of

Spain. IX. Critical and rare taxa in Extremadura. ...................... 233

G. MORENO 4 J. MORNAND — Podaxis saharianus sp. nov. (Podaxales, Gaste

romycetes), new species from Morocco .....:...............,.......... 247

M. BONENFANT-MAGNE, C. MAGNE, M. -A. ESNAULT & C. LEMOINE

— Caracterization of cultivated strains of a new edible mushroom : Stro

Pharia rugoso-annulata. 1. Protein variability ........................... 255

H. M. A. ABDELZAHER, M. A. ELNAGHY, E. M. FADL-ALLAH &

S. ZOHRI — Some physical and chemical factors affecting asexual

reproduction of three Pythium spp.............................

Bibliography oL EA E ME T Mocs SPENT nec N 279

Cryptogamie, Mycol. 1997, 18 (3) : 173-284

Source : MNHN, Paris

Cryptogamie, Mycol. 1997, 18 (3): 173-181 173

Francis BUGNICOURT (1907-1991).

Jean MOUCHACCA

Laboratoire de Cryptogamie, Muséum National d’Histoire Naturelle

12, rue Buffon, 75005 Paris, France.

RESUME : L'auteur présente une courte notice nécrologique sur la vie du phytopathologiste

ais, Francis BUGNICOURT (1907-1991). Ce texte est accompagné d'une liste commentée de

ses publications et d'une liste des taxa, alors proposés comme nouveaux pour la science. La position

taxonomique de ces espèces a été actualisée. Les localités d'origine de ces champignons sont soit au

Vietnam, soit en Nouvelle Calédonie.

MOTS-CLES : Francis BUGNICOURT, phytopathologie, nécrologie, taxonomie, Vietnam, Nou-

velle Calédonie.

ABSTRACT : A short account on the life history of the French phytopathologist Francis BUGNI-

COURT (1907-1991) is presented. Follows an annotated list of the author's publications and a list of

taxe he proposed as being new for Science. The taxonomic status of these novel fungi has been

updated. All taxa described have original localities in either Vietnam or New Caledonia.

KEY-WORDS : Francis BUGNICOURT, phytopatholoy, necrology, taxonomy, Vietnam, New

Caledonia.

C'est avec un certain retard que nous avons appris le décés de Francis BUGNI-

COURT, survenu le 7 mai 1991 dans le sud de la France, par suite de complications

post-opératoires.

C'est l'étude des champignons de la Nouvelle-Calédonie, réalisée dans le cadre

d'une action prioritaire du Muséum National d'Histoire Naturelle, qui nous a conduit à

nous intéresser à l'œuvre scientifique de ce mycologue, dont la carrière s'est entièrement

déroulée loin de la métropole. Personnellement, nous n'avons jamais rencontré F. Bugni-

court et notre seul contact avec lui se résume à un entretien téléphonique échangé en 1990,

apres notre retour d'une mission en Nouvelle-Calédonie, réalisée deux ans auparavant. Il

nous avait alors promis de passer au Laboratoire de Cryptogamie lors de sa prochaine

visite à Paris, visite qui nous aurait permis de glaner quelques informations sur le parcours

civil de ce chercheur, un des mycologues francais pionniers dans l'étude des micromycétes

en culture. F. Bugnicourt connaissait bien le Laboratoire de Cryptogamie, en raison des

liens réguliers entretenus avec Roger HEIM ; celui-ci figure d'ailleurs, parmi les quelques

personnes remerciées par F. Bugnicourt dans l'introduction de sa thése, parue en 1939 :

Bibliothéque Centrale Muséum

10033396 2

3 3001 0i

Source : MNHN, Paris

174 J. MOUCHACCA

« pour les services qu'ils nous ont rendus, à des titres divers ». D'ailleurs, dix ans plus tard,

F. Bugnicourt le recut également à Nouméa, à l'occasion du Congrés Scientifique de

Christchurch, en Nouvelle-Zélande.

Né le 10 mai 1907 à Cambrai (Nord), F. Bugnicourt se dirigera trés rapide-

ment vers les Sciences Agronomiques. Aprés avoir suivi l'Ecole d'Agriculture de Mont-

pellier où il obtint le titre d'Ingénieur Agricole, il s'inscrivit à l'Institut National

d'Agronomie Coloniale, pour faire partie du Corps des Ingénieurs d'Agronomie Colo-

niale.

La carrière coloniale de F Bugnicourt s'est déroulée exclusivement en Indochine

et en Nouvelle-Caledonie. Il arrive à Saigon en 1931 où il sera surpris par la deuxième

guerre mondiale ; il restera en Indochine jusqu’en 1946. Après un séjour en métropole,

F. Bugnicourt débarquera en Nouvelle-Calédonie en février 1948, comme directeur-

adjoint de l'Institut Français d'Océanie, devenu par la suite Centre ORSTOM de Nou-

méa. Il ne quittera ce territoire que pour prendre sa retraite, en France, le 10 mai 1964. F.

Bugnicourt épousera à Nouméa, le 28 février 1952, une Calédonienne, Paule DUCASSE.

Après son retour en France, l'état de santé précaire de M"* Bugnicourt va accaparer toute

l'attention de ce mycologue l'éloignant ainsi des centres métropolitains de recherche en

mycologie. Paule Ducasse décédera quelques années plus tard, sans avoir eu d'enfants. F.

Bugnicourt se remariera ensuite avec une métropolitaine.

Sa rencontre à l'Institut National d'Agronomie Coloniale avec le célébre phyto-

pathologiste André MAUBLANC va probablement décider de son orientation scientifi-

que. En effet, de 1922 à 1934, A. Maublanc avait également occupé les fonctions de chargé

de cours, puis de Professeur de Pathologie Végétale dans cet Institut. Mais c'est des 1919,

que A. Maublanc enseigne à l'Institut National Agronomique de Paris oú il occupera

finalement le poste de Professeur de Botanique et de Pathologie Végétale, de 1939 à 1948.

Auparavant, cet enseignant-chercheur avait acquis une expérience en mycologie tropicale

lors de son court séjour de 1912 à 1914 au Musée National de Rio de Janeiro où il avait été

chargé de l'importante mission d'organiser un laboratoire de Pathologie Végétale. Les

recherches et prospections qu'il avait alors brillamment entreprises furent cependant

interrompues par la premiére guerre mondiale.

F. Bugnicourt sera donc initié à la mycologie et surtout à la phytopathologie

tropicale, par son « Maitre » André Maublanc, comme il le précise dans sa thèse. Celui-

le recevra plusieurs fois à l'Institut National Agronomique de Paris ; en particulier, lors de

la préparation de sa thése. En Indochine, F. Bugnicourt sera affecté à l'Institut des

Recherches Agronomiques et Forestiéres de Saigon et à l'Institut des Recherches sur le

Caoutchouc, à Laikné. Il va alors diriger les Sections de Phytopathologie de ces deux

établissements tout en assumant les charges d'Inspecteur Phytosanitaire. C'est dans ce

contexte qu'il entreprendra, entre autres, ses recherches sur les genres Fusarium et Cylin-

drocarpon, thème retenu pour sa thèse de doctorat soutenue en 1939, à Paris. Auparavant,

F. Bugnicourt effectuera un séjour à Berlin-Dahlem chez le grand spécialiste de ces

champignons, le célébre Docteur H. W. WOLLENWEBER du Biologische Reichsanstalt

für Land-und Forstwirstchaft.

A l'Institut des Recherches Agronomiques de l'Indochine, F. Bugnicourt va

étudier les maladies des plantes d'interét économique qui sévissent dans cette colonie. Sa

première publication, intitulée « Travaux Cryptogamiques », traitera des affections fongi-

ques du riz, occasionnées par des espèces des genres Helminthosporium, Brachysporium,

Nigrospora, Sporotrichum, Clasterosporium, Fusarium, Cladosporium et Sclerotium. La

phytopathologie du riz restera d'ailleurs, un des théme majeurs des recherches de

F. Bugnicourt tout au long de sa carriére ; ce sujet sera à l'origine de la plupart des espéces

Source : MNHN, Paris

F. BUGNICOURT 175

nouvelles décrites par ce mycologue. Il va également s'intéresser aux maladies du tabac et

aux affections d’Aleurites montana induites par Sphaerostilbe repens, tout en poursuivant

son inventaire des Fusarium et Cylindrocarpon de plus d’une centaine d’hôtes en Indo-

chine ; ces derniers représentent des plantes de grande culture, des essences forestières ou

des plantes vivrières et ornementales, sans oublier les Fusarium à caractère entomogène. Il

s’occupera également de la maladie des ‘raies noires’ de l'écorce saignée de l'arbre à

caoutchouc, due essentiellement au Phytophthora palmivora.

Des son arrivée à Nouméa, F. Bugnicourt va poursuivre ses recherches sur les

champignons du riz et établira, en collaboration avec F. Cohic et R. Dadant, le premier

catalogue des parasites animaux et végétaux des plantes cultivées de Nouvelle-Calédonie.

Ce document sera le prélude d’une série de contributions sur la phytopathologie des

plantes à intérêt économique dans ce territoire. Ces prospections mycologiques vont

également s'étendre aux autres territoires français du Pacifique Sud.

F. Bugnicourt sera membre du Conseil de la Recherche de la Commission de

Pacifique Sud, basée à Nouméa. Il sera également nommé correspondant national de

l'Académie d'Agriculture de France et lauréat de l'Académie des Sciences. D. Brayford va

lui dédier un Fusarium, le F. bugnicourtii, mais cette espèce va très rapidement s'avérer

correspondre au Fusarium ambrosium.

PUBLICATIONS DE F. BUGNICOURT

BUGNICOURT E, 1932 — Travaux de Cryptogamie. Rapport sur le fonctionnement de la Division

de Phytopathologie pendant l'année 1931 (Section sud-indochinoise de l'Institut de

Recherches Agronomiques). (Publications de l'Institut des Recherches Agronomiques et

forestières d' Indochine). Bulletin Economique de l'Indochine, N. S., xxxv, pp. 476B-514B.

Ce rapport traite des problémes phytopathologiques observés durant l'année 1931 en

Indochine ; en particulier, des maladies fongiques du riz et du thé.

BUGNICOURT F, 1934 — Premières observations sur les maladies du Tabac dans le sud-

indochinois : programme d'études. (Publications de l'Institut des Recherches Agronomi-

ques et forestières d'Indochine). Bulletin Economique de l'Indochine, N. S., xxxvii, pp.

717-721, 3 pl.

Les principales affections du tabac observées par les responsables de l'Institut des Recher-

ches Agronomiques sont la mosaique, les pourritures induites par Fusarium oxysporum

var. nicotianae, un Bacille et des problèmes de fumagines.

BUGNICOURT F, 1934 — Principaux cryptogames parasites du Riz en Indochine et traitement à

leur opposer.

(Publications de l'Institut des Recherches Agronomiques et forestières d'Indochine)

Bulletin Economique de l'Indochine, N. S., xxxvii, pp. 1320-1321

Helminthosporium oryzae, H. sigmoideum et Brachysporium sp. s'avérent les principaux

responsables des affections de riz en Indochine.

BUGNICOURT F, 1934 — Les maladies du riz en Indochine. Bibliothèque pratique de l'Agriculteur

indochinois. Institut des Recherches Agronomiques Imprimerie Extréme-Orient, Hanoi.

?pp.

Ce document fournit des informations d'ordre systématique sur les champignons respon-

sables des maladies de riz et des traitements appropriés à appliquer.

ANONYME, 1934 — Principaux cryptogames parasites du Riz en Indochine et traitement à leur

opposer. F. Bugnicourt, Chef du Laboratoire de Mycologie de la Section Sud de l'Institut

Source : MNHN, Paris

176 J. MOUCHACCA

des Recherches Agronomiques de ' Indochine. Comptes Rendus du Conseil de Recherches

Scientifiques de l’Indochine, 26 octobre et 20 novembre 1934, pp. 23-24.

Rapport de présentation du document « Les maladies du riz en Indochine ».

BUGNICOURT F, 1934 — Contribution à l'étude du Sphaerostilbe repens Berk. & Br. I. Publica-

tions de l'Institut des Recherches Agronomiques et forestières d'Indochine. Bulletin

Economique de l'Indochine, N. S., xxxvii, pp. 1321-1322.

Sphaerostilbe repens est indiqué comme observé pour la premiére fois en Indochine, en

juillet 1934, sur Aleurites montana.

ANONYME, 1934 — Contribution à l'étude du Sphaerostilbe repens Berk. & Br. F. Bugnicourt, Chef

du Laboratoire de Mycologie de la Section Sud de l'Institut des Recherches Agronomiques

de l'Indochine. Comptes Rendus du Conseil de Recherches Scientifiques de l'Indochine, 26

octobre et 20 novembre 1934, pp. 24-25.

Rapport de présentation de l'étude précédente.

BUGNICOURT F, 1935 — Contribution à l'étude du Sphaerostilbe Berk. & Br. II. (Publications de

l'Institut des Recherches Agronomiques et Forestiéres d' Indochine). Bulletin Economique

de l'Indochine, N. S., xxxviii, pp. 471-477, 2 pl.

Poursuite des recherche sur le parasitisme du Sphaerostilbe repens sur Aleurites montana.

BUGNICOURT F, 1936 — La nécrose de l'écorce saignée de l’hévéa. Travaux du Laboratoire de

Mycologie de l'Institut des Recherches Agronomiques de l'Indochine. Imprimerie

d'Extréme-Orient, Hanoi, 24 pp.

Une étude bien documentée sur les caractères de cette importante maladie et l'évolution

des altérations, accompagnée d'une description du Fusarium responsable de cette affec-

tion, considéré proche de F. theobromae Wollenweber & Reinking.

BUGNICOURT E, 1939 — Les Fusarium et Cylindrocarpon de l'Indochine. (Encyclopédie Mycolo-

gique, Vol. XI), 206 pp., X pl., 36 fig., Paul Lechevalier, Paris. Achevé d'imprimer le 29

juillet 1939.

Cette thése présente les résultats des recherches entreprises depuis sept ans en Indochine.

Des descriptions détaillées de trente Fusarium et Cylindrocarpon sont fournies. Sont

proposées comme nouvelles pour la Science, deux variétés nouvelles de Fusarium et huit

espéces nouvelles de Cylincrocarpon. Une liste inédite de nombreuses plantes-hótes carac-

térise cette étude.

BUGNICOURT E, 1941 (?) — Sur deux mycoses fusariennes des cochenilles des Aurantiacées.

Institut des Recherches Agronomiques et Forestiéres de l'Indochine, 12 pp.

Description des Fusarium juruanum Hennings et F. coccophilum (Desm.) Wollenweber &

Reinking, observés sur plusieurs insectes. Publication postérieure à la thése, citée en

bibliogrpahie.

BUGNICOURT F., 1942 — La maladie du « Gigantisme » du Riz. Publications de l'Institut des

Recherches Agronomiques et Forestiéres d'Indochine. Bulletin Economique de l'Indo-

chine, Hanoi. ? pp.

Traite des effets induits par l'hormone végétale de croissance, l'acide gibberellique, pro-

duite par des Fusarium, anamorphes de certains Gibberella.

BUGNICOURT F., 1942 — Action rhizogène des hétéro-auxines et de certaines vitamines et

zoohormones sur quelques plantes tropicales d'interêt économique. Publications de l'Ins-

titut des Recherches Agronomiques et Forestiéres d'Indochine. Bulletin Economique de

l'Indochine II, 41 pp. -

Aucune copie de cet article n'a pu étre localisée.

F. BUGNICOURT 177

BUGNICOURT E, 1946 — La maladie des « Raies Noires » de l'écorce saignée. Cahiers de l'Institut

de Recherches sur le Caoutchouc en Indochine, II, pp. 41-67, 13 pl. (3 coul.), 10 fig., 10

graph.

Phytophthora palmivora est suspecté représenter l'agent principal de cette affection. Etude

exhaustive des relations champignon-hóte. i

BUGNICOURT F, 1949 — Les espèces du genre Curvularia isolées des semences de riz. Communi-

cation présentée au 7° Congrès Scientifique du Pacifique à Auckland et Christchurch.

Le contenu de cette communicaiton a fait l’objet d'une note ultérieure dans la Revue

générale de Botanique.

BUGNICOURT F., 1950 — Les espèces du genre Curvularia isolées des semences de riz. Revue

générale de Botanique, 57 (672) : 65-77, 2 pl..

Descriptions des Curvularia maculans (Bancroft) Boedijn, C. oryzae Bugnicourt sp. nov., C.

lunata (Wakker) Boedijn, C. geniculata (Tracy & Earle) Boedijn et C. uncinula Bugnicourt

Sp. nov.

BUGNICOURT F, 1950 — Le « Scolyte du grain de café » en Nouvelle-Calédonie. Revue Agricole

de la Nouvelle-Calédonie, Nouvelle Série, T. 1, No. janvier-février, pp. 3-4.

Article de vulgarisation destiné aux cultivateurs de café.

BUGNICOURT F, 1950 — Sur une méthode de contamination artificielle. Son application pour la

recherche d'arbres résistants à certaines maladies cryptogamiques. Revue générale de

Botanique, 57 (673) : 157-167, 2 pl., 1 fig.

Description d'une nouvelle technique pour tester la résistance des arbres aux maladies

fongiques. Utilisée pour évaluer la résistance de l'arbre à caoutchouc au Phytophthora

palmivora, celle de Cinchonia ledgeriana à une espéce supposée nouvelle de ce genre et du

cafféier robusta à une espéce de Thielaviopsis.

BUGNICOURT E, COHIC F. & DADANT R., 1951 — Catalogue des parasites animaux et

végétaux des plantes cultivées de Nouvelle-Calédonie. Institut Frangais d'Océanie, ORS-

TOM, Nouméa, 120 pp., ronéo.

Liste des plantes et animaux principaux parasites des plantes cultivées en Nouvelle-

Calédonie, avec des informations sur les types d'affections et l'importance économique.

BUGNICOURT F, 1951 — Mycoflore des semences du riz. In « Conférence Phytosanitaire de Suva,

Fidji (2-11 avril 1951) ». Rapport de la Conférence sur la Quarantaine Végétale et

Animale, Suva, Fidji, avril 1951. Commission du Pacifique Sud, Nouméa, Rapport

Technique No. 9.

Les éléments de cette contribution ont fait l'objet de publication dans la Revue de

Mycologie.

BUGNICOURT F., 1952 — Note sur la mycoflore des semences de riz dans les territoires du Pacifique

Sud. Commission du Pacifique Sud, Nouméa, Document Technique No. 21, janvier 1952,

5 pp.

Ce document est une simple copie de la note parue dans la Revue de Mycologie.

BUGNICOURT F, 1952 — Note sur la mycoflore des semences de riz dans les territoires du Pacifique

Sud. Revue de Mycologie, 17, Supplément Colonial, 1 : 26-29.

Descriptif des échantillons de riz étudiés et techniques d'isolements de champignons à

partir de ces grains. Fréquences d'observation des vingt espéces de champignons isolées.

BUGNICOURT F, 1952 — Une espèce fusarienne nouvelle, parasite du riz. Revue générale de

Botanique, 59 (695), pp. 13-18, 1 pl., 1 fig.

Description de Fusarium annulatum Bugnicourt sp. nov., isolé de grains de riz.

178 J. MOUCHACCA

BUGNICOURT F, 1952 — Contribution à l'étude systématique de deux micromycétes parasites du

riz. Revue générale de Botanique, 59 (702) : 413-420, 2 pl.

Descriptions de Trichoconis padwickii Ganguly et Helicoceras oryzii Linder & Tullis, isolés

de grains de riz.

BUGNICOURT F, 1954 — Champignons parasites des plantes cultivées en Nouvelle-Calédonie. In

« Congrés de la protection des végétaux et de leurs produits sous les climats chauds (21-24

septembre 1954) ». Institut Frangais d'Outre-Mer, Marseille, pp. 235-239.

L'auteur présente une liste des champignons parasites de plantes cultivées dans ce terri-

toire.

ANONYME, 1954 — Phytopathologie, Courrier des Chercheurs de l'Office de Recherches Scienti-

fiques d'Outre-Mer, No. 8, pp. 159 — 186.

F. Bugnicourt présente un rapport sur une nouvelle maladie du Taro de Nouvelles-

Hébrides, cultivé sur la côte est de Nouvelle-Calédonie, induite par Pythium irregulare.

BUGNICOURT F., 1955 — Deux espèces nouvelles d'Helminthosporium isolées de semences du riz.

Revue générale de Botanique, 62 (734) : 238-243, 3 fig.

Descriptions de Helminthosporium hawaiiense Bugnicourt et H. australiense Bugnicourt

spp. nov., isolés de grains de riz.

BUGNICOURT F., 1956 — Champignons parasites de plantes cultivées en Nouvelle-Calédonie.

Institut Français d'Océanie, ORSTOM, Nouméa, 23 pp., ronéo.

Complète les listes précédentes avec quelques observations nouvelles.

BUGNICOURT F., 1958 — Sur une maladie du mais. Revue Agricole de la Nouvelle-Calédonie,

T. 9, No. octobre-novembre, pp. 1-5.

Grains de maïs infectés par Fusarium moniliforme et F. graminearum. Desinfection des

semences et rotation des cultures comme moyens de prévention

BUGNICOURT F., 1958 — Contribution à l'étude de Cladosporium colocasiae Sawada. Revue de

Mycologie, Paris, 23(2) : 233-236, 1 pl., 1 fig..

Ce champignon s'observe fréquemment sur les plants de Colocasia antiquorum, cultivés en

Nouvelle-Calédonie.

BUGNICOURT E & MARTY J., 1961 — Champignons parasites des plantes cultivées en Nouvelle-

Calédonie, Laboratoire de Phytopathologie, Institut Français d'Océanie, ORSTOM, Nou-

méa, Imprimerie Nouvelle D. Tardieu, 20 pp.

Une mise à jour des listes précédentes. Propose un classement alphabétique par hôte (102

espèces) et un classement alphabétique des champignons (183 taxons).

STATUTS ACTUELS DES TAXONS NOUVEAUX PROPOSÉS

PAR F. BUGNICOURT

Les taxons reconnus valides sont indiqués en caractères gras.

— Curvularia oryzae Bugnicourt — Revue générale de botanique 57 : 69. 1950 ; Ellis — Mycological

Papers 106 : 29. 1966.

Isolé pour la première fois, en 1940, de grains de riz cultivé en Cochinchine.

— Curvularia uncinula Bugnicourt - Revue générale de botanique 57 : 72. 1950 : Ellis — Mycological

Papers 106 : 36. 1966.

Observé à partir de grains de riz cultivé en Cochinchine, dès 1940.

Source : MNHN. Paris

F. BUGNICOURT 179

— Cylindrocarpon cochinchinense Bugnicourt — Encyclopédie Mycologique 11 : 166. 1939.

Selon Booth (1966), l'absence de matériel authentique ne permet pas de statuer sur la

validité de cette espèce Ce matériel fut isolée de rameaux de Sindora cochinchinensis,

Province de Bien-Hoa en Cochinchine, juin 1937 : également de feuilles de Aleurites

montana, en Cochinchine.

— Cylindrocarpon curtum Bugnicourt — Encyclopédie Mycologique 11 : 181. 1939.

L'absence de matériel authentique n'a pas permis à Booth (1966) de statuer sur la validité

de cette espéce. La culture originale fut isolé de tige de Arachis hypogea provenant de la

Province de Gia-Dinh, en Cochinchine, novembre 1936 ; également de feuilles de Soja

hispida, méme localité.

— Cylindrocarpon effusum Bugnicourt — Encyclopédie Mycologique 11 : 194. 1939; Booth —

Mycological Papers 104 : 45. 1966.

Reconnu comme valide par Booth (1966). Isolé pour la premiére fois, de racines de

Dracaena terminalis, Province de Gia-Dinh, Cochinchine, mars 1937

— Cylindrocarpon suballantoideum Wollenweber — In Bugnicourt : Encyclopédie Mycologique 11

174. 1939.

Lors de sa description, ce Cylindrocarpon fut considéré comme représentant la forme

conidienne de Nectria cinereo-papillata P. Hennings (Monsunia 1 : 161. 1899). Toutefois

selon Booth (1966), ce Nectria est identique au N. jungneri P. Hennings. Cylindrocapron

suballantoideum serait ainsi un synonyme de C. victoriae (P. Henn. : Wr.) Wollenweber,

anamorphe de N. jungneri

Cylindrcarpon lichenicola (C. Massal.) D. Hawksworth — Bulletin of the British Museum, Botany

Series 6 : 273. 1979

basionyme : Cylindrocarpon lichenicola C. Massalongo.

= Cylindrocarepon tonkinense Bugnicourt — Encyclopédie Mycologique 11 : 181. 1939 ;

Booth — Mycological Papers 104 : 42. 1966 ; from de Hoog & Guarro (Ed.) — Atlas of

Clinical Fungi : 498. 1996.

Cylindrocarpon tonkinense fut isolé en Indochine de graines et de racines de diverses

plantes dont Musa sapientum. D'abord retenu comme espéce valide par Booth (1966) mais

récemment reconnu comme identique au Cylindrocarpon lichenicola.

— Cylindrocladium gracile (Bugnicourt) Boesewinkel — Transactions of the British mycological

Society 78 : 554. 1982 ; Crous & Wingfield — Mycotaxon 51 : 376. 1994.

basionyme : Cylindrocarpon gracile Bugnicourt — Encyclopédie Mycologique 11 : 162.

1939.

La culture orginale fut isolée de feuilles de Argyreia splendens, Province de Gia-Dinh en

Cochinchine, mars 1937 ; également de collet de Pahudia cochinchinensis, méme localité

— Cylindrocladium reteaudii (Bugnicourt) Boesewinkel — Transactions of the British mycological

Society 78 : 554. 1982 ; Crous & Wingfield — Mycotaxon 51 : 400. 1994.

basionyme : Cylindrocarpon reteaudii Bugnicourt [comme “reteaudi] — Encyclopédie

Mycologique 11 : 189. 1939.

Holomorph : Calonectria reteaudii (Bugnicourt) Booth — Mycological Papers 104 : 41.

1966

basionym : Neonectria reteaudii Bugnicourt [comme ‘reteaudi] — Encyclopédie Mycolo-

gique 11 : 189. 1939.

Dédié par Bugnicourt à Monsieur L. Réteaud alors Inspecteur Général de l'Agriculture,

de l'Elevage et des Forêts de l'Indochine. Isolé de collet et pivot de Smithia bequaertii,

Provinces du Haut-Donnai et Blao, Sud Annam, novembre 1936.

Source : MNHN, Paris

180 J. MOUCHACCA

— Cylindrocladium tenue (Bugnicourt) T. Watanabe — Mycologia 86(3) : 155. 1994.

basionyme : Cylindrocarpon tenue Bugnicourt — Encyclopédie Mycologique 11 : 178

1939.

= Glioeladiopsis tenuis (Bugnicourt) Crous & Wingfield — Mycological Research 97 : 446.

1993.

Ce Cylindrocarpon futisolé en Indochine de feuilles, racines er rameaux de diverses plantes.

— Drechslera australiensis (Bugnicourt) Subram. & Jain : M.B. Ellis — Dematiaceous Hyphomyce-

tes :413. 1971(diagnose latine) ; Subramanian & Jain [as ‘australiense’| — Current Science

35 : 354. 1966. x

basionyme : Helminthosporium australiense Bugnicourt — Révue générale de Botanique

62 : 242. 1955 (nom. inval., Art. 36.1)

Isolé en Nouvelle-Calédonie pour la première fois, de grains de riz en provenance de

l'Australie.

Drechslera hawaiiensis (Bugnicourt) Subram. & Jain ; M.B. Ellis — Dematiaceous Hyphomycetes :

415. 1971 (diagnose latine) ; Subramanian & Jain [as hawaiiense'] — Current Science 35 :

354. 1966.

basionyme : Helminthosporium hawaiiense Bugnicourt - Revue générale de Botanique 62 :

238. 1955. (nom. inval., Art.36.1)

solé la premiere fois à l'Institut Français d'Oécanie, Nouméa, de grains de riz cultivé dans

les îles Hawaii.

— Fusarium ambrosium (Gadd & Loos) Agnihothrudu & Nirenberg — Studies in Mycology 32 : 98

1990

basionyme : Monacrosporium ambrosium Gadd & Loos — Transactions of the British

mycological Society 31 : 17. 1947.

Fusarium bugnicourtii D. Brayford — Transactions of the British mycological Society

89 : 350. 1987.

basionyme : Fusarium tumidum Sherbakof var. coeruleum Bugnicourt — Encyclopédie

Mycologique 11 : 83. 1939.

La variété coeruleum du Fusarium tumidum avait été reconnu comme agent de nécrose des

tiges d’ Hevea brasiliensis Müll. Arg. au Sud Vietnam, en Cochinchine, XII. 1936.

— Fusarium annulatum Bugnicourt — Revue générale de Botanique 59 : 17. 1952.

Ce Fusarium, longtemps considéré identique au F. moniliforme Sheldon, a été réhabilité

comme espèce distincte par Nirenberg (1976). Actuellement connu seulement par son

matériel original. Il a été isolé à l'origine de grains de riz cultivé en Nouvelle Calédonie,

district de Canala sur la cóte est, et également de riz cultivé en Nouvelle Guinée Néerlan-

daise, région de Merauke.

— Fusarium stilboides Wollenweber — Fusaria autographice delineata : 615. 1924

= Fusarium stilboides var. minus Wollenweber emend. Bugnicourt — Encyclopédie Myco-

logique 11 : 92. 1939

Une interprétation plus large du concept de l'espèce Fusarium stilboides conduit à consi-

dérer la variété minus comme non séparable de l'espèce mère.

— Fusarium oxysporum Schlechtendahl emend. Snyder & Hansen — American Journal of Botany

27 : 64-67. 1940.

= Fusarium oxysporum Schlechtendahl var. meniscoideum Bugnicourt — Encyclopédie

Mycologique 11 : 111. 1939.

La définition actuelle du Fusarium oxysporum englobe les distinctions variétales antérieu-

res. La variété fut isolée à l'origine de collet de Xeranthemum annuuam, Province de

Gia-Dinh, en Cochinchine, février 1937 ; également de système racinaire de Thea sinensis

au Sud-Annam.

Source : MNHN. Paris

F. BUGNICOURT 181

BIBLIOGRAPHIE

BOOTH C., 1966 — The genus Cylindrocarpon. Mycological Papers 104 : 1-56.

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Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1997, 18 (3): 183-219 183

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS MENACÉS

DE LA REGION NORD-PAS-DE-CALAIS (FRANCE)

Régis COURTECUISSE

Département de Botanique

Faculté des Sciences Pharmaceutiques et Biologiques. BP 83

[Groupe de Recherche sur la Biodiversité et la Bioindication ; ER 148]

F — 59006 Lille Cedex [e-mail : rcourtec@phare univ-lille2.fr]

RÉSUMÉ : L'auteur présente la liste rouge des champignons menacés de la région Nord- Pas-de-

Calais. Il s'agit de la première liste rouge mycologique en France. Après des remarques sur les

principaux concepts relatifs à cette démarche et aux modes opératoires permettant de rédiger un tel

document, la liste est présentée en deux parties. L'une concerne les espèces effectivement menacées, la

seconde les espèces potentiellement menacées. Chacun de ces niveaux regroupe 21 à 22% de la

mycoflore régionale, l'ensemble de la liste rouge concernant 43,47 % de cette mycoflore. Ces chiffres

assez alarmants témoignent de l'importance et de l'urgence des recherches visant à expliquer les

phénomènes de disparition ou de régression constatées, d'autant que les espèces ectomycorhiziques

semblent, comme dans d'autres régions d'Europe, le groupe le plus concerné

MOTS-CLÉS : Liste rouge, Fungi, Nord - Pas-de-Calais, Protection

SUMMARY : The author presents the Red Data List of threatened Fungi in Nord-Pas-de-Calais

region (Northern France). This is the first mycological red list in France. After remarks concerning

the main concepts in this topic and operating steps toward the preparation of such a document, the

listitself is arranged in two parts. The first one deals with actually threatened species, the second with

potentially threatened species. Each of these two levels gathers about 22 to 23 % of the regional

mycoflora, the complete red list dealing with 43,47 % of this mycoflora. These rather alarming

numbers point toward the importance and emergency for researches trying to explain the demons-

trated extinctions or regressions, especially because, as in other european areas, ectomycorrhizal

Species seem to be the most concerned group.

KEY-WORDS : Red Data List, Fungi, Nord-Pas-de-Calais (France), Conservation

La Revue Cryptogamie-Mycologie publie la « Liste Rouge des champignons menacés de la région

Nord-Pas-de-Calais (France) » en raison de l'importance scientifique que représentent de tels tra-

vaux. La forme de cet article, assez inhabituelle et davantage apparentee à celle d’un rapport, a

cependant été intégralement conservée. Il s'agit en effet d'un travail qui a fait l'objet d'un Contrat

d'Objectif et qui sera diffusé prochainement, en tant que rapport dans le cadre de ce contrat, avec

l'aide financiére de différentes administrations de la région Nord-Pas-de-Calais.

Source : MNHN, Paris

184 R. COURTECUISSE

INTRODUCTION

Le Programme National d'Inventaire et de Cartographie des Mycota frangais

(Courtecuisse, 1992a) vise à la rédaction d'une liste aussi complète que possible des

espèces fongiques présentes sur notre territoire, et à la préparation de cartes de répartition

fine pour chaque taxon recensé. Un des corollaires essentiels d’une telle démarche est la

mise en évidence d'éventuels phénomènes de régression pour certaines des espèces, ce qui

est possible, en particulier, lorsque l’on prend en compte des paramètres temporels, au sein

de chaque maille cartographique (une approche empirique peut également donner des

résultats significatifs, même s'ils sont évidemment moins objectifs). On peut ainsi mettre

en évidence le recul (voire l'extinction) de telle espéce dans telle maille (ou dans tel

ensemble de mailles), depuis un nombre d'années donné. A partir de telles constatations,

il est possible de hiérarchiser les inventaires en catégories de menace, ces derniéres

intégrant les différents niveaux de régression : ancienneté du recul constaté, étendue de

l'aire perdue, rareté actuelle de l'espèce, etc. Le résultat d'une telle opération est une liste

rouge, document présentant l'ensemble des étres vivants (ici les champignons) dont

l'existence ou la survie sont compromises, par les activités humaines ou par toute autre

menace.

Actuellement, au niveau national (Courtecuisse & de Munnik, 1997), la phase

inventoriale est suffisamment avancée pour que la publication d'une première liste des

espéces de champignons (au moins pour certains groupes) présents sur le territoire

français soit envisagée prochainement (Courtecuisse, 1998b, 1998c). Les opérations car-

tographiques suivent également leur cours mais sont actuellement un peu moins avancées

(ce qui est normal, étant donné l'ampleur de la táche et les difficultés techniques pour un

pays de la taille de la France). Dés que possible, c'est-à-dire quand la construction des

cartes de répartition sera suffisamment avancée, une liste rouge nationale pourra étre

proposée. Ce document est attendu à l'horizon de l'an 2000.

Dans la région Nord-Pas-de-Calais, le Programme d'Inventaire et de Cartogra-

phie des Mycota a été soutenu, dés 1991, sous la forme d'un Contrat d'Objectif, récemment

renouvelé, entre la Région et l'Université (Responsable Scientifique : R. Courtecuisse). Ce

contrat a permis d'optimiser cette démarche et d'en favoriser les progrés, tant au point de

vue inventorial que cartographique ou patrimonial. Parallélement, les activités mycologi-

ques régionales (en particulier au sein de la Société Mycologique du Nord) ont généré un

certain nombre de publications qui témoignent également d'une action centrée sur cette

thématique (par exemple, Courtecuisse, 1996 ; Courtecuisse & Fournier, 1997). Enfin, la

rédaction de plusieurs théses de doctorat en Pharmacie, préparées sous la direction de

R. Courtecuisse (Beauvillain-Legrand & Beauvillain, 1992 ; Boutoille, 1998; Caron &

Caron-Bodard, 1998 ; Charlet-Verrier, 1994 ; Chopin, 1998 ; Delemer, 1992 ; Hubert-

Gauthier, 1997; Ghoris, 1994; Le Bivic, 1994; Leclercq, 1992; Levecq-Lefebvre &

Levecq, 1995; Quénu, 1998 ; Smague, 1996 ; Veryepe-Lefebvre, 1998), ont également

apporté une grande quantité de données indispensables á la réalisation de ce programme.

Grâce à cette large expérience acquise, il est aujourd’hui possible de présenter

une liste rouge des champignons menacés de la région Nord - Pas-de-Calais. Dès 1993, nous

annoncions ce document de manière imminente (Courtecuisse 1992b)... Il nous a pourtant

semblé préférable de le laisser mûrir quelques années supplémentaires, de façon à prolon-

ger une réflexion en cours sur l'application régionale des catégories habituellement utili-

sées dans les listes rouges européennes (voir ci-dessous) et aussi pour vérifier certaines

données encore fragmentaires, que nous ne voulions pas inclure dans le document final

sans de nouvelles récoltes ou sans confirmation. De ce point de vue, l'année 1996 a été

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS) 185

particulièrement fructueuse, puisque la région Nord-Pas-de-Calais a bénéficié d'une

poussée fongique exceptionnelle (Courtecuisse, 1997).

Les aspects techniques concernant la préparation de cette liste rouge régionale

sont abordés plus loin (voir aussi Courtecuisse, 1998a).

Avant de présenter la liste rouge elle-même (voir annexe), il nous semble utile de

préciser les concepts adoptés, en particulier à propos des critères d’inscription sur la liste

et des catégories de menaces retenues. Ces paragraphes aideront à la lecture et à la bonne

interprétation de la liste rouge proprement dite.

CRITÈRES D'INSCRIPTION, CATÉGORIES DE MENACE

1) Les critères d'inscription sur une liste rouge.

Dans les travaux européens (niveau national ou régional) existants, trois critères

d'inscription principaux se dégagent. On peut les résumer de la façon suivante :

+ espèces très rares, présentes dans un nombre très restreint de stations, dont la perturba-

tion amènerait directement à leur disparition ou à leur raréfaction drastique.

+ espèces ayant connu une diminution importante de fréquence au cours des dernières années.

L'estimation de ce paramètre est souvent très délicate, pour différentes raisons

(en particulier par manque d'informations anciennes).

« espèces de fréquence variable (pas forcément très rares) mais liées à des biotopes eux-

mêmes fortement menacés.

Ces critères ont été évidemment retenus dans notre démarche régionale.

Cependant, ilnous semble nécessaire d’ajouter un critère supplémentaire, issu de

la prise en compte de la situation globale des espèces. En effet, les considérations amenant

les auteurs à proposer une liste rouge pour leur région ou leur pays sont très généralement

centrées sur des considérations purement locales (à l'échelle de la région ou du pays) et ne

tiennent pas clairement compte de la situation hors des limites territoriales fixées (ou en

tous cas de manière insuffisante).

Or, il est très important d'intégrer dans la démarche la situation globale des

espèces considérées.

Imaginons un champignon qui semblerait se maintenir de manière très satisfai-

sante dans un secteur donné (nommons le « région A »). Si cette région se trouve au centre

géographique de l'aire de répartition de l'espèce, il paraît logique de considérer cette espèce

non menacée (notons cependant que certaines espèces subissent des régressions globales

d'emblée). Mais, il est possible que l'espèce en question soit plus ou moins menacée ailleurs

(en cours de raréfaction par exemple), en particulier sur les marges de son aire de

répartition. A l'échelle de son aire globale, un probléme existe donc manifestement,

probléme non perceptible si l'on se contente d'observer la situation locale. Si cette

tendance à la régression se confirme et évolue, son aire risque de se trouver diminuée au fil

du temps (en particulier si aucune mesure conservatoire n'est prise en sa faveur ou s’il n'est

pas possible d'intervenir, là où les problèmes se sont d'abord manifestés), et la région A

peut brutalement constituer le dernier bastion de résistance de l'espéce, alors que tout

semblait rassurant à son sujet.

Source : MNHN, Paris

186 R. COURTECUISSE

Certaines espèces, apparemment menacées au plan global (citations dans plu-

sieurs listes rouges européennes), sont ainsi présentes et prospères sur le territoire de la

région Nord - Pas-de-Calais. Il nous semble important de les inscrire sur notre liste rouge,

au titre de réservoir génétique pour des taxons potentiellement menacés globalement ou

dont l'aire semble subir une érosion de ses marges (phénomène pervers et dangereux

puisqu'il passe facilement inaperçu).

Nous ajouterons donc un quatrième critère d'inscription sur notre liste rouge :

+ espèces apparemment prospères au niveau régional, pour le moment, mais subissant une

menace effective assez forte dans différents pays européens.

2) Les catégories de menace.

Comme pour les critères d'inscription, nous avons bien sûr tenu compte des

catégories de menace classiquement retenues dans les listes rouges publiées dans les pays

voisins. Cependant, une certaine disparité de concepts peut être constatée entre différents

auteurs : on note la présence fréquente de 5 catégories, par exemple pour les Pays-Bas

(Arnolds, 1989), mais aussi parfois de 4 degrés de menace, par exemple pour le Danemark

(Vesterholt & Knudsen, 1990).

Nous avons donc procédé à une réflexion sur les possibilités d’application de ces

différents systèmes à l'échelle de la région Nord - Pas-de-Calais. L'introduction d'un

quatrième critère d'inscription nous a également conduit à modifier la présentation de

cette liste rouge régionale.

De manière à en optimiser l'interprétation et la lisibilité il semble opportun de la

partager en deux niveaux de lecture. Le premier niveau concernera les espèces effectivement

menacées, le second les espèces potentiellement menacées.

Pour le reste, les catégories retenues reprennent approximativement les idées

directrices du schéma à 5 catégories (par exemple Arnolds, 1989), avec l'ajout d'une

catégorie supplémentaire, réunissant les espèces retenues en fonction du quatrième critère

d'inscription analysé ci-dessus. Notre liste rouge comprend donc six catégories de menace.

La structure en est la suivante :

Liste rouge de Niveau I (espèces effectivement menacées)

Catégorie 0, ESPÈCES CONSIDÉRÉES COMME ÉTEINTES (non revues depuis 1980)

Dans cette catégorie sont inscrites toutes les espèces apparemment disparues,

c’est-à-dire pour lesquelles aucune récolte n'est connue depuis 1980. Le choix de la date

limite (1980) est relativement arbitraire et délicat en mycologie en raison des fluctuations

dans les poussées fongiques. Cette date semble constituer un moyen terme, par comparai-

son avec les autres listes rouges européennes.

Catégorie 1, ESPÈCES MENACÉES D'EXTINCTION

On trouvera dans cette catégorie les espèces répondant à l’un des critères

suivants :

a) espèces très rares, strictement limitées à des biotopes eux-mêmes fortement menacés ou

b) espèces rares à très rares, ayant subi une très forte régression depuis les années 60 ou

c) espèces non revues depuis 1985.

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NOR D-PAS-DE-CALAIS) 187

Il est à noter que les listes rouges de plusieurs pays prennent en compte les

espèces ayant subi une très forte régression depuis le début du siècle. Les données régionales

étant très fragmentaires avant 1960, nous avons préféré adapter ce critère en tenant compte

de la réalité des relevés disponibles (même remarque pour les catégories 2 et 3).

Catégorie 2, ESPÈCES FORTEMENT MENACÉES

Cette catégorie réunit les espèces répondant à l’un des critères suivants :

a) espèces rares, venant préférentiellement dans des stations elles-mêmes menacées ou

b) espèce rares ayant subi une régression notable depuis les années 60.

ÈCES MENACÉES

Catégorie 3,

Les critère d'inscription dans cette catégorie sont les suivants :

a) espèces rares ou dispersées, venant plutôt dans des biotopes mena

b) espèces assez rares à rares ayant assez fortement régressé depuis les années 60.

és ou

Liste rouge de Niveau II (espèces potentiellement menacées ou globalement sensibles)

Catégorie 4, ESPÈCES POTENTIELLEMENT MENACÉES OÙ VULNÉRABLES

a) espèces rares ou très rares, sans tendance manifeste actuelle à se raréfier et venant dans

des habitats non spécialement menacés pour le moment ou

b) espèces connues d’une seule récolte dans la région, de ce fait potentiellement menacées

(surtout dans le cas de stations sensibles ou vulnérables)

Catégorie 5, ESPÈCES SENSIBLES

espèces apparemment non menacées pour le moment dans la région Nord - Pas-de-Calais,

mais à surveiller en raison d’une valeur patrimoniale importante dans d’autres

régions d'Europe.

ASPECTS TECHNIQUES DE LA RÉDACTION D'UNE LISTE ROUGE

La préparation d'une liste rouge impose l'étude approfondie d'un certain nom-

bre de documents, préexistants ou élaborés dans ce but.

Il faut en particulier :

+ constituer un inventaire des publications régionales, sans oublier de compulser la littéra-

ture mycologique générale, non régionale et méme étrangére, susceptible

d'héberger des citations de récoltes concernant le territoire en cause ; en parti-

culier les grandes révisions monographiques, prenant en compte des spécimens

d'herbiers institutionnels, qui peuvent concerner des récoltes envoyées, pour

révision, à des spécialistes étrangers ;

+ préparer un inventaire (catalogue) de tous les taxons présents sur le territoire étudié. Cette

liste provient des publications (ci-dessus) mais aussi des relevés effectués sur le

terrain par les mycologues régionaux, à des périodes anciennes ou modernes.

Idéalement, il faudrait disposer de relevés anciens et actuels comparables en

terme d'intensité de prospection, ce qui est très rarement le cas. Il est également

Source : MNHN, Paris

188 R. COURTECUISSE

indispensable de procéder á des campagnes de relevés spécialement axées vers

un enrichissement de l'inventaire régional (étude de milieux peu prospectés,

étude de groupes peu étudiés, etc.). La mise en place de cet inventaire sous-

entend donc un très gros travail, à la fois taxonomique (efforts de détermination

dans des groupes de champignons mal connus ou difficiles) et nomenclatural

(homogénéisation de la terminologie des relevés de périodes différentes) ;

» évaluer l'évolution des aires de répartition et des fréquences d'apparition de chaque espéce

recensée sur le secteur étudié. Cette évaluation peut se faire de maniére empiri-

que (impressions recueillies auprés des mycologues, en fonction de leur expé-

rience de terrain) ou objective (par développement d'un programme de carto-

graphie fine, intégrant, pour chaque maille cartographique, des données

chronologiques). Si l'approche empirique donne déjà des résultats intéressants,

il est évident que la rigueur d'un programme cartographique est préférable.

Pour la région Nord - Pas-de-Calais, une approche mixte a été effectuée, les

cartes détaillées n'étant, pourle moment, disponibles que pour certains groupes

particuliers (essentiellement des mycorhiziques) ;

« consulter les données patrimoniales relatives aux milieux naturels. En effet, les menaces

pesant sur les champignons sont en grande partie liées à celles qui compromet-

tent l'avenir de leurs biotopes. Les inventaires ZNIEFF (Zones Naturelles

d'Intérét Écologique, Faunistique et Floristique) et les divers classements de

sites, reconnus d'intérét patrimonial par les diverses structures administratives

ou scientifiques (pour le Nord - Pas-de-Calais, CSENPC, CSNPC, CSRPN,

ENR, ONE, etc. !) qui opérent dans une région donnée, peuvent procurer une

trame de départ importante dans cette démarche. Cependant, cette approche

par milieux n'est évidemment pas suffisante, certaines espèces fongiques parti-

culiérement intéressantes et de haute valeur patrimoniale colonisant parfois des

milieux totalement banals aux yeux d'un botaniste ou d'un phytosociologue ;

+ consulter les listes rouges publiées en Europe, de manière à préciser le statut relatif des

espéces régionales, à une échelle globale (voir discussion sur ce point plus haut).

Un document compilatoire a été préparé dans ce but (Courtecuisse, 1993).

- alléger les listes hiérarchisées obtenues par l'analyse de tous les documents sus-cités (qui

permettent d'établir une liste rouge préliminaire déjà largement argumentée),

en supprimant tous les taxons d'interprétation taxonomique douteuse (par

exemple citations anciennes, pour lesquelles une certitude de correspondance

taxonomique actuelle ne peut pas étre obtenue ou récoltes anciennes apparte-

nant à des groupes taxonomiques que plus personne n'étudie suffisamment de

nos jours), tous les cas litigieux (par exemple espéces rares et difficiles, sur le

plan taxonomique, pour lesquelles on n'a pas de trace objective — échantillons

d’herbier). Il est également préférable d'inclure les taxons infra-spécifiques sous

une seule rubrique, sauf évidemment dans le cas où une variété ou une forme

semble se comporter de manière très différente, par rapport au type.

« il est également prudent (mais non indispensable si toutes les conditions ci-dessus sont

remplies d'emblée) d'attendre quelques saisons supplémentaires pour contrôler

certaines absences et certaines données.

1. CSENPC = Conseil Scientifique de l'Environnement du Nord et du Pas-de-Calais ; CSNPC =

Conservatoire des Sites Naturels du Nord - Pas-de-Calais ; CSRPN : Conseil Scientifique Regional

du Patrimoine Naturel ; ENR = Espace Naturel Régional ; ONF = Office National des Forêts)

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NOR D-PAS-DE-CALAIS) 189

Dans le cas de cette liste rouge pour la région Nord-Pas-de-Calais, nous avons

exploité l'ensemble des données disponibles, dans la limite de leur fiabilité taxonomique. Si

certains documents datent du début du siècle, les connaissances mycologiques régionales

se sont réellement développées à partir des années 1950-1960. Une forte intensification de

la pratique des relevés est intervenue depuis une quinzaine d’années (il est intéressant de

noter que malgré cet accroissement des travaux sur le terrain, une régression des espèces

apparaît assez nettement). Comme dans beaucoup d’autres régions, les mycologues ont

tendance à revenir souvent dans les mêmes stations. Cette habitude a été combattue depuis

une dizaine d'années et a amené la découverte de nombreuses espèces non encore recensées

sur le territoire étudié ainsi qu’une meilleure connaissance de la répartition des espèces.

L'introduction, dans la liste rouge, des nouveaux venus n'a pas été systématique mais

conditionnée par leur rareté globale ou par leur statut d'espèce menacée dans d'autres

pays européens. Dans la plupart des cas, ils ont été inscrits en catégorie 4 (surtout si une

seule station est connue) mais cette attribution sera évidemment reconsidérée dans l’ave-

nir, lorsque leur statut régional sera mieux connu. La plupart des espèces recensées sont

conservées dans l'herbier Courtecuisse (LIP ? ), quelquefois dans d'autres herbiers privés.

Ce dépôt est systématique pour tout taxon nouvellement recensé dans la région. Les

déterminations anciennes et crédibles ont été admises, même lorsque tout contrôle était

impossible, mais les noms les plus douteux ont été supprimés de la liste rouge. Les

déterminations récentes sont effectuées de manière rigoureuse par quelques-uns des

membres de la Société Mycologique du Nord et, pour les cas litigieux, les spécimens sont

contrôlés et nommés par R. Courtecuisse ou éventuellement par M. Bon.

DISCUSSION

L'interprétation détaillée de la liste rouge régionale sera développée par ailleurs

(Courtecuisse, 1998a), mais quelques faits frappants apparaissent à la lecture des listes des

différentes catégories et peuvent d'ores et déjà être soulignés.

+ L'ensemble des espèces inscrites dans différentes catégories de menace représente

43,47 % de la mycoflore régionale. Ce chiffre semblera excessif et alarmiste à

certains lecteurs, mais il repose en grande partie sur des constatations cartogra-

phiques objectives et avérées. Nous avons différé la publication de ce document

de près de 5 ans, depuis sa première version, souhaitant ainsi bénéficier du recul

nécessaire à l'obtention d'une fiabilité suffisante des informations. Il faut aussi

pondérer ce chiffre en rappelant que la scission de la liste rouge en deux niveaux

de lecture attribue environ 21 à 22 % de la mycoflore régionale à chacun d’entre

eux (628 espèces effectivement menacées et 608 espèces potentiellement mena-

cées).

« Les symbiontes semblent particulièrement sensibles ou menacés. En effet, si l’on se réfère à

la 3° colonne de la liste rouge, le type ectomycorhizique (EcM) apparaît très

fréquemment (536 espèces, soit 43,36 % de la liste rouge, alors qu'ils ne repré-

sentent que 32,3 % de la mycoflore régionale). Cette constatation est particu-

lièrement inquiétante puisque ce sont ces champignons qui possèdent le rôle

fonctionnel le plus important, à l'échelle des écosystèmes naturels et de leur

2. L’herbier du Laboratoire de Botanique, Faculté des Sciences Pharmaceutiques et Biologiques de

Lille, comprenant des plantes supérieures, des mousses, des lichens et des champignons est en cours

d'enregistrement à I’ Index Herbariorum sous l'abréviation LIP.

Source : MNHN. Paris

190 R. COURTECUISSE

équilibre. Il est donc urgent d'étudier les causes de ces régressions ou d'envisa-

ger des solutions permettant d'assurer l’avenir de ces espèces. Des travaux ont

commencé dans ce sens en région Nord - Pas-de-Calais (voir aussi la conclu-

sion de ce travail).

+ La liste rouge présentée ci-dessous ne permet pas, bien évidemment, de visualiser

l'évolution chorologique des espèces qui la composent. Il est pourtant intéres-

sant de signaler qu'une tendance comportementale relativement homogène se

dégage pour les espèces ecto-mycorhiziques (les autres types biologiques ne

montrent pas les mêmes tendances). Celles-ci semblent se raréfier, voire dispa-

raítre, au centre de la région Nord - Pas-de-Calais, pour se « réfugier » vers ses

deux extrémités, occidentale (Boulonnais en particulier) et orientale (Avesnois),

où elles se maintiennent relativement bien. Les études cartographiques

(Charlet-Verrier, 1994 ; Levecq-Lefebvre et Levecq, 1995) ayant démontré cette

tendance concernent les Russulaceae, les Boletales et les Cortinariales. De

nouvelles études en cours, concernant les autres taxons mycorhiziques (Ama-

nitales, Tricholomataceae p.p., en particulier), semblent la confirmer. Les deux

sous-régions citées voient donc leur importance patrimoniale (déjà largement

reconnue des points de vue botanique, phytosociologique, ornithologique,

entomologique, etc.) encore confortée par l'argument mycologique. Cette adé-

quation confirme la valeur bio-indicatrice des champignons (celle-ci s'exergant

dans des domaines variés -voir, par exemple, Courtecuisse, 1988), tout particu-

lièrement, dans ce cas régional, en ce qui concerne la valeur patrimoniale et

l'intégrité (notion qui prend en compte des paramètres de gestion tradition-

nelle) d'un terroir. D'autre part, cette constatation pourra servir d'argument et

de base pour des études visant à interpréter cette migration régressive. Les

comparaisons inter-stationnelles, mettant en jeu divers paramètres environne-

mentaux (pressions anthropiques, pollutions, fréquentation, gestion, etc.),

diverses espèces (appartenant à des types biologiques différents), divers tra-

ceurs (biochimiques par exemple), permettront vraisemblablement, dans l’ave-

nir, de mieux comprendre les causes de ces régressions ou de ces disparitions.

Lorsque cela sera possible, des mesures de restauration des biotopes pourront

accompagner les indispensables mesures de protection du patrimoine naturel

résiduel, ces dernières devant être prises le plus rapidement possible.

CONCLUSION

En conclusion, nous devons souligner le fait qu'une liste rouge est un document

dépourvu de valeur légale. Il ne s'agit que d'un document de travail, destiné aux scientifi-

ques et à tous les usagers et gestionnaires de la nature et de l'environnement, soucieux de

l'avenir de notre patrimoine naturel.

Il faut considérer une telle liste sans pessimisme ni catastrophisme excessifs. Au

contraire, chacun doit s'interroger, de maniére constructive, sur les causes du constat (ce

dernier étant le plus objectif possible) et réfléchir aux moyens de protéger et de restaurer

les milieux favorables aux espéces les plus menacées. Une telle liste est l'occasion de se

rappeler que la perte d'une espéce (qu'elle soit fongique ou autre) est un préjudice, le plus

souvent irréversible, à l'intégrité fonctionnelle et à la richesse patrimoniale de notre

environnement naturel traditionnel. Toute modification, aussi superficielle en apparence

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS) 191

que la disparition d'une espèce de champignon, peut avoir des répercussions aux propor-

tions imprévisibles à l'échelle d'un écosystème.

La rédaction d’une liste rouge n’est pas une fin en soi. En fait, le souhait qui

émerge, dès l'achèvement d'une telle rédaction, est de voir la liste se réduire, dans l'avenir.

Il s'agit d'un document de travail, appelé à évoluer. Cette évolution doit se

développer dans deux directions :

» Par des travaux de terrain complémentaires, il faut continuer à améliorer l'objectivité du

classement des espéces dans les différentes catégories de menace. Ces travaux

doivent se concentrer sur la recherche des espéces menacées, dans leurs biotopes

(en espérant retrouver les espéces disparues ou menacées d'extinction), sur

l'exploration de biotopes rares ou précieux (de manière à préciser les corréla-

tions entre champignons et milieux menacés), sur l'amélioration de la précision

taxonomique dans des groupes difficiles ou relativement mal connus, à l'échelle

régionale.

+ En fonction des améliorations ainsi obtenues et des certitudes accrues qui en découlent,

effectuer des démarches administratives pour faire publier une liste d’especes

légalement protégées, d'abord à l'échelle régionale. La liste rouge nationale,

actuellement en préparation, suivra les mémes étapes et aboutira à la proposi-

tion d'une liste d'espéces légalement protégées en France. C'est en tous cas le

but final poursuivi par ce programme de recherches. Le concept d'espéce

fongique légalement protégée mérite bien sur une discussion propre. Ce sujet

sera abordé par ailleurs, mais on peut évidemment souligner le fait que la

protection des champignons passe par la protection, aussi intégrale que possi-

ble, de leur biotope.

Il est également hors de propos d'aborder ici l'interprétation écologique et

patrimoniale détaillée de cette liste. Elle doit se faire en parallèle avec une interprétation

des connaissances inventoriales portant sur l'ensemble de la région, sur les principaux

types de milieux (forêts, prairies, pelouses, dunes, etc.) et sur quelques stations particuliè-

res. Cette étude sera proposée par ailleurs. Elle met en évidence la menace particuliére qui

semble peser sur les espéces ecto-mycorhiziques. Ce type biologique, si important dans le

fonctionnement des écosystémes, surtout forestiers, semble donc le plus sensible, dans le

domaine de la protection des champignons.

Pour terminer, il faut insister sur la nécessité de voir publier prochainement

d'autres listes rouges régionales en France. Des travaux sont d'ores et déjà en cours, en

particulier dans les régions Franche-Comté, Haute-Normandie, Pays-de-Loire. Nous

encourageons trés vivement les responsables régionaux, impliqués dans la structure du

Programme National d'Inventaire et de Cartographie des Mycota Francais, à entrepren-

dre la rédaction de tels documents, en collaboration avec les mycologues de leur région.

Beaucoup de régions frangaises disposent d'inventaires mycologiques suffisamment avan-

cés (ces inventaires seront, entre autres, la base de l'inventaire national en cours de

rédaction) pour aborder cette nouvelle approche. Nous sommes évidemment à la dispo-

sition de toute personne souhaitant des renseignements complémentaires ou des conseils

rédactionnels dans ce sens.

Source : MNHN, Paris

192 R. COURTECUISSE

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Source : MNHN. Paris

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(Université de Lille II), in prep.

VESTERHOLT J. & KNUDSEN H., 1990 — Truede storsvampe i Danmark — en rodliste. 64 pp.

ANNEXE : LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS MENACÉS

DE LA REGION NORD-PAS-DE-CALAIS.

Note : la première colonne présente le nom des taxons retenus pour chaque catégorie ; la seconde

colonne comprend le numéro du ou des département(s) où l'espèce est signalée (Nord — 59

ou/et Pas-de-Calais — 62). Pour les deux premières catégories, les années des dernières

récoltes figurent entre parenthèses lorsque cette donnée a été décisive pour l'attribution de

l'espèce en cause à cette catégorie de menace ; la troisième colonne précise le type biologi-

que de l'espèce (EcM = Ectomycorhizique, S = Saprophyte, SL = Saprophyte Lignicole,

PN = Parasite nécrotrophe [F = fungicole], PB = Parasite Biotrophe)

Source : MNHN. Paris

194 R. COURTECUISSE

LISTE ROUGE DE NIVEAU I

CATÉGORIE 0, ESPÈCES CONSIDÉRÉES COMME ÉTEINTES

(NON REVUES DEPUIS 1980)

Agaricus benesii (Pilát) Singer

Agaricus subfloccosus (J. E. Lange) Pilát

Amanita caesarea (Scop. : Fr.) Pers.

Clitocybe houghtonii (Phillips) Dennis

Conocybe coprophila (Kühner) Kühner

Cortinarius caesiocyaneus Britzlemayer

Cortinarius castaneus (Bull. : Er.) Fr.

Cortinarius cumatilis Er.

Cortinarius fulgens Fr.

Cortinarius leucopus (Pers. : Fr.) Fr.

Cortinarius paramoenolens Henry

Cortinarius phaeochrous Favre

Cortinarius polychrous Henry

Cortinarius pseudoarcuatus (Alb. & Schw.) Fr.

Cortinarius renidens Fr.

Cortinarius safranopes Henry

Cortinarius salignus (Moser & Keller) Garnier

Cortinarius saturatus J. E. Lange

Cortinarius saturninus (Fr.) Er.

Cortinarius subbalteatus Kühner

Cortinarius subpurpurascens (Batsch) Kickx

Cortinarius subsertipes Romagnesi

Cortinarius tophaceus Fr.

Cortinarius triformis Fr.

Cortinarius turibulosus J. Schaeffer & Horak

Cortinarius variegatus Bres.

Cortinarius varius (Sch. : Er.) Fr.

Cortinarius vibratilis (Fr. : Fr.) Fr.

Cystolepiota adulterina fo. reidii M. Bon

Flammulaster granulosus (J. E. Lange) Watling

Galerina alluviana A. H. Smith

Galerina calyptrata Orton

Galerina luteofulva Orton

Galerina pseudocamerina Singer

Galerina pseudomniophila Kühner

Galerina tibiicystis (Atkinson) Kühner

Gomphidius glutinosus (J. C. Sch. : Fr.) Er.

Gomphus clavatus (Pers. : Fr.) S. F. Gray

Gymnopilus liquiritiae (Pers.) P. Karsten

Gyroporus cyanescens (Bull. : Fr.) Quelet

Hygrocybe olivaceonigra (Orton) Moser

59 (1971)

62 (1971)

59(?) 3

59 (1979)

59, 62 (1976)

62 (1973)

59 (1978), 62 (1979)

62 (1971)

62 (1973)

59 (1970), 62 (1974)

62 (1963)

59 (1973)

62 (1974)

62 (1979)

59 (1974)

59, 62 (1979)

59 (1979)

62 (1974)

59 (1979)

62 (1974)

59 (1979), 62 (1974)

62 (1974)

62 (1970)

59 (1979)

59 ( ?), 62 (1980)

62 (1978)

59 (1974)

62 (1963)

62 (1980)

62 (1977)

59 (1977)

62 (1979)

59 (1969), 62 (1972)

59 (1973)

59(2)*

62 (1978)

59 (1979)

62 (1971)

3. date exacte de disparition inconnue ; en tous cas, plusieurs décennies

4. date exacte de disparition incertaine.

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

Hygrocybe persistens (Britz.) Singer

Hygrocybe splendidissima Orton

Hygrophorus olivaceoalbus var. gracilis

Hygrophorus pustulatus (Pers. : Fr.) Fr.

Inocybe acutella M. Bon

Inocybe appendiculata Kühner

Inocybe casimiri Velenovsky

Inocybe commutabilis Furrer

Inocybe erinaceomorpha Stangl & Veselsky

Inocybe fuscomarginata Kühner

Inocybe heimiana M. Bon

Inocybe leucoblema Kühner

Inocybe longicystis Velenovsky

Inocybe posterula (Britz.) Saccardo

Inocybe quietiodor M. Bon

Inocybe sororia Kauffmann

Inocybe valida Malençon ex M. Bon

ybe xanthodisca Kühner

Lactarius porninsis Rolland

Lepiota brunneolilacea M. Bon & Boiffard

Lepiota lilacea var. pallida Bon, Migl. & Cher.

Leucoagaricus gaillardii M. Bon & Boiffard

Leucoagaricus menieri (Saccardo) Singer

Leucocoprinus medioflavus (Boudier) Bon

Limacella illinita var. ochraceorosea Bég. & Bon

Limacella ochraceolutea Orton

Lyophyllum semitale (Fr.) Kühner

Melanoleuca bataillei Malençon

Melanoleuca friesii (Bresadola) M. Bon

Mycena atroalba (Bolt. : Fr.) Gillet

Mycena purpureofusca (Peck) Saccardo

Mycena urania (Fr. : Fr.) Quélet

Panaeolus obliquoporus M. Bon

Panaeolus retirugis (Fr.) Quélet

Pholiota fusa (Batsch) Singer

Pholiota subsquarrosa (Fr.) Quélet

Psathyrella pseudocorrugis (Romagn.) Romagn.

Psilocybe luteonitens (Vahl. : Fr.) Parker-Rhodes

P. semilanceata var. caerulescens (Cke) Sacc.

Russula alutacea (Pers. : Fr.) Fr.

Russula emetica var. gregaria Kauffmann

Russula flavocitrina Blum ex M. Bon

Russula flavoviridis Romagnesi

Russula gigasperma Romagnesi

Russula impolita (Romagnesi) M. Bon

Russula innocua (Singer) Romagnesi ex M. Bon

Russula lilacinopunctata Gillet

Russula nobilis Velenovsky

Russula roseipes (Secrétan) ex Bresadola

Russula rubra var. poliopus Romagnesi

Russula subcompacta Britzelmayer

Russula terenopus Romagnesi

Russula versatilis Romagnesi

62 (1984)

62 (1974)

62 (1977)

59 (1980)

62 (1974)

62 (1980)

62 (1974)

59 (1979)

59 (1974), 62 (1974)

59 (1976), 62 (1980)

59 (1974)

62 (1971)

62 (1980)

59 (2), 62 (1977)

59 (1975), 62 (1969)

62 (1975)

62 (1972)

59 (1975)

62 (1979)

62 (1973)

62 (1979)

62 (1980)

62 (1979)

59, 62 (1979)

62 (1977)

62 (1980)

62 (1978)

62 (1977)

62 (1974)

62 (1979)

59 (1969)

62 (années 1960)

62 (1980)

62 (1974)

62 (1971)

59, 62 (1963)

62 (1963)

62 (1965)

62 (1980)

62 (1967)

62 (1970)

62 (1969)

62 (1963)

62 (1974)

62 (1969)

62 (1962)

62 (1967)

62 (1977)

195

wu uu uuutudguuuu

ere e

mmm

388

SES

EcM

Source : MNHN. Paris

196 R. COURTECUISSE

Russula zvarae var. salmonicolor Romagnesi

Suillus bellinii (Inzenga) O. Kuntze

Tricholoma ramentaceum var. pseudotriste Bon

Tubaria minutalis Romagnesi

98 espèces.

CATÉGORIE 1, ESPÈCES MENACÉES D'EXTINCTION

62 (1967)

62 (1980)

62 (1974)

59 (1979)

a) espèces très rares, strictement limitées à des biotopes eux-mêmes fortement menacés ou

b) espèces rares à très rares, ayant subi une très forte régression depuis le début du siècle

(depuis les années 60 pour la région Nord-Pas-de-Calais) ou

c) espèces non revues depuis 1985.

Agaricus niveolutescens Huijsman

Agrocybe elatella (P. Karsten) Vesterholt

Alnicola geraniolens Courtecuisse

Boletopsis subsquamosa (L. : Fr.) Kotl. & Pouz.

Boletus xanthocyaneus Ramain ex Romagnesi

Camarophyllopsis foetens (Phillips) Arnolds

Camarophyllopsis phaeophylla (Rom.) Arnolds

Campanella inquilina Romagnesi

Cellypha goldbachii (Weinmann) Donk

Ceratobasidium cornigerum (Bourdot) Rogers

Chroogomphus helveticus (Singer) Moser

Clitopilus omphaliformis Josserand

Conocybe inocybeoides Watling

Cortinarius camphoratus (Er. : Fr.) Fr.

Cortinarius crocolitus Quélet

Cortinarius cyanopus Secrétan

Cortinarius fuscoperonatus Kühner

Cortinarius mairei (Mos.) Moser ex Bidaud & al.

Cortinarius mellinus Britzelmayr

Cortinarius ochropallidus Henry

Cortinarius orellanoides Henry

Cortinarius orellanus Fr.

Cortinarius prasinocyaneus Henry

Cortinarius privignofulvus Henry

Cortinarius pseudocyanites Henry

Cortinarius rubellopes Henry

Cystolepiota luteicystidiata (Reid) M. Bon

Echinoderma calcicola (Knudsen) M. Bon

Entoloma eccentricum Bresadola

Entoloma galericolor Courtecuisse

Entoloma inopiliforme Bon

Entoloma lanicum (Romagnesi) Noordeloos

Entoloma minutum (P. Karsten) Noordeloos

Entoloma pseudoeccentricum (Rom.) Zschiesch.

Entoloma vinaceum (Scop.) Arnolds $: Noord.

Galerina ampullaceocystis Orton

Galerina cephalotricha Kühner

Gomphidius maculatus (Scop.) Fr.

62 (1980)

59, 62

62 (1981)

59 (1981)

59, 62

59 (1981)

62 (1981)

59 (1981), 62

59 (1981)

59, 62 (1981)

59 (1981)

59, 62

59 (1981)

62 (1987)

62 (1984)

59 (1981)

59 (1982)

62 (1986)

59 (1985)

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

mopilus flavus (Bres.) Singer

Gymnopilus fulgens (Favre & Maire) Singer

Hebeloma nudipes Er.

Hericium flagellum (Scop.)Pers. (=H.coralloides)

Hydnotria tulasnei Berk. & Br.

Hygrocybe calyptriformis (Berk.) Fayod

Hygrocybe fornicata (Fr.) Singer

Hygrocybe riparia Kreisel

Hygrophorus latitabundus Britzlemayr

Hypocreopsis lichenoides (Tode : Fr.) Seaver

Inocybe abietis Kühner ex Kühner

Inocybe confusa P. Karsten

Inocybe griseovelata Kühner

Inocybe halophila Heim

Inocybe ovalispora Kauffmann

Inocybe pallidipes Ellis & Everhart

Inocybe rhodiola Bresadola

Inocybe sambucina (Fr.) Quélet

Inocybe straminipes Romagnesi

Inocybe subhirtella M. Bon

Inocybe tricolor Kühner

Lactarius acris (Bolt. : Fr.) S. F. Gray

Lactarius clethrophilus Romagnesi

Lactarius picinus Fr.

Lactarius salmonicolor Heim & Leclair

Lactarius uvidus var. candidulus Neuhoff

Lepiota lilacea Bresadola

Lepiota pseudolilacea Huijsman

Lepiota rufipes Morgan

Mycena stannea (Fr.) Quélet

Nidularia deformis (Willd. : Pers.) Fr. £ Nordh.

Oliveonia fibrillosa (Burt) Donk

Phacotellus griseopallidus (Desm.) Courtec.

(incl. var. tetrasporus Kühn. & Lam. ex Courtec.)

Phallus hadriani Vent. : Pers.

Phellodon niger (Fr. : Fr.) P. Karsten

Pholiotina peronata (Kühner & R. Maire) Singer

Psathyrella sphagnicola (R. Maire) Favre

Psilocybe merdaria (Fr. : Fr.) Ricken.

Psilocybe merdicola Huijsman

Ramaria aurea (J. C. Sch.) Quélet

Ramaria botrytis (Pers. : Fr.) Ricken

Ramaria flava (J. C. Sch. : Fr.) Quélet

Ramaria formosa (Fr. : Fr.) Quélet

Russula citrinochlora Singer

Russula fragrantissima Romagnesi

Russula laeta Möller & J. Schaeffer

Russula lepidicolor Romagnesi

Russula pallidospora (Blum) ex Romagnesi

Sarcodon imbricatum (L. : Fr.) P. Karsten

Stropharia halophila var. occidentalis

Tricholoma focale (Fr.) Ricken

Tricholoma fracticum (Britz.) Kreisel

59 (1984)

62 (1982)

59 (1981), 62 (1974)

59 (1981)

59(1981)

62 (1985)

59(1981), 62(1895)

59 (1981)

62 (1982)

59, 62 (1985)

59 (1981)

59, 62 (1981)

59 (1981)

59 (1984)

62 (1984)

62 (1981)

59 (198 ?)

59, 62

59 (1981)

59 (1981), 62

62 (1983)

59, 62 (1982)

59 (1981)

62 (1981)

59 (1981)

62 (1982)

62 (1981)

59, 62 (1981)

197

Source : MNHN, Paris

198 R. COURTECUISSE

Tricholoma imbricatum (Fr. : Fr) Kummer

Tricholoma triste (Scop.) Quélet

Tricholoma viridilutescens Moser

Tyromyces kmetii (Bres.) Bondarzew & Singer

94 espèces

CATÉGORIE 2, ESPÉCES FORTEMENT MENACÉES

59 (1981)

EcM

a) espèces rares, venant préférentiellement dans des stations elles-mêmes menacées ou

b) espèce rares ayant subi une régression notable depuis le début du siècle

(depuis les années 60 pour la région Nord-Pas-de-Calais)

Agaricus albertit M. Bon

Agaricus cupreobrunneus (Möller) Pilät

Agaricus lanipes (Möl. & J. Schaeff.) J. Hlav.

Agaricus spissicaulis Möller

Agrocybe pusiola (Fr.) Heim

Agrocybe sphaleromorpha (Bull. : Fr.) Fayod

Alnicola amarescens (Quélet) Heim & Romagnesi

Alnicola pseudoamarescens Kühner & Romagnesi

Amanita ceciliae (Berk. & Br.) Bas

Amanita echinocephala (Vittadini) Quélet

Amanita ovoidea (Bull. : Fr.) Link

Amanita verna (Bull. : Fr.) Lamarck

Boletus pinophilus Pilat £ Dermek

Boletus radicans Pers. : Fr.

Boletus satanas Lenz

Camarophyllopsis atropuncta (Pers. : Fr) Arn.

Cantharellus friesii Quélet

Cantharellus ianthinoxanthus R. Maire

Cantharellus melanoxeros Desmazières

Clavaria incarnata Weinmann

Clavaria zollingeri Léveillé

Clavariadelphus pistillaris (L. : Fr.) Donk

Clavulinopsis corniculata (J, C. Sch. : Fr.) Corn.

Clavulinopsis subtilis (Er. : Fr. ) Corner

Clitopilus cretatus (Berk. & Br.) Saccardo

Coprinus ammophilae Courtecuisse

Coprinus gonophyllus Quélet

Coprinus heterosetulosus Locquin ex Watling

Coprinus narcoticus (Batsch : Fr.) Fr.

Cortinarius armillatus (Alb. & Schw. : Fr.) Fr.

Cortinarius calochrous (Pers. : Fr.) Fr. 59, 62

(incl. var. coniferarum (Moser) Moser ex Nezdoiminogo)

Cortinarius evernius (Fr. : Fr.) Fr.

Cortinarius helobius Romagnesi

Cortinarius humicola (Quélet) Maire

Cortinarius mucosus (Bull.) Kickx

Cortinarius privignus (Fr.) Fr.

Cortinarius salor Fr.

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

Cortinarius semisanguineus (Fr. : Fr.) Gillet

Crepidotus mollis var. calolepis (Er.) Pilát

Cristinia helvetica (Pers.) Parmasto

Cuphophyllus pratensis (Pers. : Fr.) M. Bon

Cuphophyllus russocoriaceus (Berk. & Mill.) Bon

Cystolepiota hetieri (Boudier) Singer

Dermoloma atrocinereum (Pers.) Orton

Dermoloma cuneifolium (Fr.) Herink

Echinoderma pseudoasperulum (Knudsen) M. Bon

Entoloma ameides (Berk. & Br.) Saccardo

Entoloma aprile (Britz.) Saccardo

Entoloma bisporigerum Noordeloos

Entoloma bloxamii (Berk. £ Br.) Saccardo

Entoloma costatum (Fr. : Fr.) Kummer

Entoloma dysthaloides Noordeloos

Entoloma farinogustus Arnolds & Noordeloos

Entoloma infulum (Fr.) Noordeloos

Entoloma jubatum (Fr. : Fr.) P. Karsten

Entoloma lazulinum (Fr.) Noordeloos

Entoloma myrmecophilum (Romagnesi) Noord

Entoloma nitens (Velenovsky) Noordeloos

Entoloma olorinum (Romagn. & Favre) Noord.

Entoloma papillatum (Bres.) Dennis

Entoloma querquedulum (Romagnesi) Noordeloos

Entoloma rhodocylix (Lasch) Moser

Entoloma rhombisporum (Kühn. & Bours.) Horak

Entoloma scabrosum (Fr.) Noordeloos

Entoloma turci (Bresadola) Moser

Galerina clavus Romagnesi

Galerina embolus (Fr.) Orton

Galerina nana (Petri) Kühner

Galerina pumila (Pers. : Fr.) Singer

Galerina uncialis (Britz.) Kühner

Geoglossum fallax Durand

Guepiniopsis buccina (Pers. : Fr.) Kennedy

Gymnopilus odini (Fr.) Kühner

Gyrodon lividus (Bull. : Fr.) P. Karsten

Gyroporus castaneus (Bull. : Fr.) Quélet

Hebeloma ammophilum Bohus

Hebeloma elatum (Batsch : Fr.) Gillet

Hebeloma fusipes Bresadola

Hebeloma psammophilum M. Bon

Hebeloma vaccinum Romagnesi

Helvella atra Kón. : Fr.

Helvella corium Weberbeier

Hemipholiota myosotis (Fr. : Fr.) M. Bon

Hericium erinaceum (Bull. : Fr.) Pers.

Hohenbuehelia culmicola M. Bon

Hydnellum aurantiacum (Batsch : Fr.) P. Karsten

Hygrocybe aurantiosplendens Haller

Hygrocybe conicoides (Orton) Orton & Watling

Hygrocybe helobia (Arnolds) M. Bon

Hygrocybe irrigata (Pers. : Fr.) M. Bon

199

EcM

wu uwuwuutuuutuuuvtuuuuuuututuutuuuuuuuu

Source : MNHN, Paris

200 R. COURTECUISSE

Hygrocybe lepida Arnolds

Hygrocybe minutula (Peck) Murrill

Hygrocybe punicea (Fr. : Fr.) Kummer

Hygrocybe reidii Kühner

Hygrocybe subglobispora (Orton) Moser

Hygrocybe unguinosa (Fr. : Fr.) P. Karsten

Hygrophorus agathosmus (Fr.) Fr.

Hygrophorus arbustivus ( Fr.) Fr.

Hygrophorus chrysodon (Batsch : Fr) Fr.

Inocybe albidodisca Kühner

Inocybe albomarginata Velenovsky

Inocybe alluvionis Stangl & Veselsky

Inocybe dunensis Orton

(inel. var. paucicystidiata M. Bon)

Inocybe hirtelloides Stangl & Veselsky

Inocybe metrodii Stangl & Veselsky

Inocybe nitidiuscula (Britz.) Saccardo

Inocybe olida R. Maire

Inocybe paludinella (Peck) Saccardo

(incl. fo. citrophylla Guinberteau)

Inocybe parvispora Alessio

Inocybe personata Kiihner

Inocybe vulpinella Bruylants

(incl. var. fuscolamellata M. Bon)

Inonotus cuticularis (Bull. : Fr.) P. Karsten

Inonotus rheades (Pers.) Bondarzew & Singer

Lactarius aspideus (Er.) Fr.

Lactarius flavidus Boudier

Lactarius fuscus Rolland

Lactarius romagnesii M. Bon

Lactarius semisanguifluus Heim & Leclair

Lactarius subruginosus Blum

Lactarius trivialis (Er. : Fr.) Fr.

Leccinum alboroseolum (Blum) Lannoy & Estades

Leccinum cyaneobasileucum Lannoy & Estades

Lentinellus bisus (Quélet) Kühner & R. Maire

Lepiota brunneoincarnata Chodat & Martin

L. cystophoroides var. septentrionalis M. Bon

Lepiota grangei (Eyre) J. E. Lange

Lepiota griseovirens var. obscura Locquin ex Bon

Lepiota helveoloides Bon ex M. Bon & Andary

Lepiota setulosa J. E. Lange

Leucoagaricus littoralis (Menier) M. Bon & Boiff.

Leucoagaricus marriagei (Reid) M. Bon

Leucoagaricus pilatianus (Demoul.) Bon & Boiff.

Leucoagaricus purpureorimosus M. Bon & Boiff.

(incl. fo. pallidus M. Bon)

Leucoagaricus sublittoralis (Kühn. ex Hora) Sing.

Leucopaxillus giganteus (Leyss. : Fr.) Singer

Macrolepiota subsquarrosa (Locquin) M. Bon

Marasmius limosus Boudier

Melanoleuca cinereifolia var. maritima (Huijsm.) Bon,

Melanoleuca cognata (Fr.) Konrad & Maublanc

Source : MNHN. Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

Microglossum fuscorubens Boudier

Mycena alphitophora (Berk.) Saccardo

Mycena bulbosa (Cejp) Kühner

Mycena longiseta von Höhnel

Mycena pseudopicta (J. E. Lange) Kühner

Mycenella margaritispora (J. E. Lange) Singer

Neolentinus schaefferi (Weinm.) Redhead & Ginns

Omphalina bacospora Singer

Omphalotus illudens (Schw.) Saccardo

Oxyporus populinus (Schum. : Fr.) Donk

-a succosella (Legal & Romagnesi) Moser

a violacea Pers.

Pholiota adiposa (Fr. : Fr.) Kummer

Pholiota astragalina (Fr. : Fr.) Singer

Pholiota flammans (Batsch : Fr.) Kummer

Pholiotina cyanopus (Atkinson) Singer

Pholiotina exannulata (Kühn. ex Kühn. & Watl.) Curtec.

Pluteus hiatulus Romagnesi

Pluteus hispidulus var. cephalocystis Schreurs

Pluteus podospileus Saccardo & Cuboni

Polyporus mori (Poll. : Fr.) Fr.

Porpoloma spinulosum (Kühn. & Romagn.) Sing,

Pseudocraterellus pusillus (Er. : Fr.)

Psilocybe modesta (Peck) A. H. Smith

Psilocybe turficola Favre

Ramicola maritima (M. Bon) M. Bon

Rhodocybe fallax (Quélet) Singer

Rozites caperatus (Pers. : Fr.) P. Karsten

Rugosomyces obscurissimus (Pearson) M. Bon

Russula amarissima Romagnesi & Gilbert

Russula amoena Quélet

Russula aquosa Leclair

Russula badia Quélet

Russula borealis Kauffmann

Russula curtipes Möller & J. Schaeffer

Russula fragrans Romagnesi

Russula melzeri Zvara

Russula minutula Velenovsky

Russula pumila Rouzeau & Massart

Russula roseicolor Blum

Russula rutila Romagnesi

Russula violacea Quélet

Rutstroemia maritima (Rob.) Dennis

Scutellinia diaboli (Vel.) Legal

ytinostroma hemidichophyticum Pouzar

Sericeomyces sericatellus (Mal. & Bert.) M. Bon

Stereum insignitum Quélet

Stropharia ochrocyanea M. Bon

Suillus tridentinus (Bres.) Singer

Suillus viscidus (L.) Roussel

Tephrocybe graminicola M. Bon

Tephrocybe oldae Svrcek

Tremella encephala (Willd. : Fr.) Pers.

59, 62

201

Source : MNHN, Paris

202 R. COURTECUISSE

Trichoglossum hirsutum (Pers. : Fr) Boudier

Tricholoma orirubens Quélet

Tricholoma squarrulosum Bres.

Tricholoma virgatum (Fr, : Fr.) Kummer

Tulostoma squamosum Gmel. : Pers.

197 espèces

CATÉGORIE 3, ESPÈCES MENACÉES

a) espèces rares ou dispersées, venant plutôt dans des biotopes menacés ou

b) espèces assez rares à rares ayant assez fortement regressé depuis le début du siècle

(depuis les années 60 pour la région Nord-Pas-de-Calais).

Agaricus bisporus (J. E. Lange) Imbach

(incl. var. albidus (J. E. Lange) Singer)

Agaricus campestris var. equestris (Möller) Pilät

Agaricus devoniensis Orton

Agaricus fissuratus (Möller) Möller

Agaricus koelerionensis (M. Bon) M. Bon

Agaricus porphyrrhizon Orton

Agrocybe arvalis (Fr. : Fr.) Singer

Agrocybe subpediades (Murrill) Watling

Alnicola alnetorum (R. Maire) Kühner

Alnicola celluloderma Orton

Amanita eliae Quélet

Amanita lividopallescens (Gill.) Gilbert & Kühner

(incl. var. tigrina Romagnesi ex M.Bon)

Amanita mairei Foley

Ascotremella faginea (Peck) Seaver

Astraeus hygrometricus (Pers. : Pers.) Morgan

Aureoboletus gentilis (Quélet) Pouzar

Boletus aereus Bull. : Fr.

Boletus appendiculatus J. C. Sch.

Boletus queletii Schulzer

Calvatia utriformis (Bull. : Pers.) Jaap

Clavulinopsis helvola (Pers. : Fr.) Corner

Clavulinopsis luteoalba (Rea) Corner

Clitocybe alexandri (Gillet) Gillet

Clitopilus pinsitus (Er. : Fr.) Josserand

Collybia fuscopurpurea (Pers. : Fr.) Kummer

Collybia hybrida (Kühn. & Romagn.) Svrcek & Kub.

Conocybe dunensis Wallace

Coprinus patouillardii Quélet

Cortinarius alboviolaceus (Pers. : Fr.) Fr.

Cortinarius basililaceus Orton

Cortinarius betuletorum Moser

Cortinarius bibulus Quélet

Cortinarius bivelus (Fr. : Fr.) Fr.

Cortinarius erythrinus (Er.) Fr.

Cortinarius fragrantior M. Bon & Gaugué

Cortinarius hinnuleus (Sow.) Er.

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NOR D-PAS-DE-CALAIS) 203

Cortinarius infractus (Pers. : Fr.) Fr. 59, 62 EcM

Cortinarius largus Fr. 59, 62 EcM

Cortinarius melanotus Kalchbrenner 62 EcM

Cortinarius multiformis (Fr.) Fr. 59, 62 EcM

Cortinarius nemorensis (Fr.) J. E. Lange 59, 62 EcM

Cortinarius phoeniceus (Bull.) R. Maire 59, 62 ECM

Cortinarius porphyropus (Alb. &.Schw.) Fr. 59, 62 EcM

Cortinarius pratensis (Bon & Gaugué) Hoiland 59 EcM

Cortinarius pseudoprivignus Henry 62 EcM

Cortinarius pulchripes Favre 62 ECM

Cortinarius rigens (Pers.) Fr. 59,62 EcM

Cortinarius rubicundulus (Rea) Pearson 59, 62 EcM

Cortinarius scaurus (Fr. : Fr.) Fr. 62 EcM

Cortinarius splendens Henry 59, 62 EcM

Cortinarius torvus (Fr. : Fr.) Fr. 59, 62 EcM

Cotylidia pannosa (Sow. : Fr.) Reid 59 SL

Creolophus cirrhatus (Pers. : Fr.) P. Karsten 59 SL

Crepidotus amygdalosporus Kühner 59,62 SL

Crepidotus autochtonus J. E. Lange 59, 62 SL

Crepidotus brunneoroseus Courtecuisse 59 SL

Crepidotus mollis var. pseudoapplanatus Pilät 59 SL

Cuphophyllus cereopallidus (Clémengon) M. Bon 59, 62 s?

Cystoderma carcharias (Pers.) Fayod 59,62 s

Cystolepiota rosea (Rea) Singer 59 s

Daldinia vernicosa (Schw.) Cesati & De Notaris 59 SL

Dendropolyporus umbellatus (Pers. : Fr.) Jülich 59, 62 SL

Echinoderma eriophorum (Peck) M. Bon 59 s

Echinoderma hispidum (Lasch) M. Bon 59, 62 s

Entoloma aranacosum (Quélet) Moser 62 s

(incl. fo. fulvostrigosum)

Entoloma byssisedum (Pers. : Fr.) Donk 59 SL

oloma caccabus (Kühner) Noordeloos 62 s

Entoloma incanum (Fr. : Fr.) Hesler 59,62 s

Entoloma nitidum Quélet 59, 62 s?

Entoloma occultopigmentatum Arn. & Noord. 59 s

Entoloma pernitrosum (Orton) Trimbach 59 s

Entoloma rugosum (Malençon) M. Bon 62 s

Entoloma tenellum (Favre) Noordeloos 59, 62 s

Entoloma versatile (Gillet) Moser 62 s

Gamundia pseudoclusilis (Joss. & Konr.) Raith. 62 s

Geoglossum cookeianum Nannfeldt 62 s

Gerronema marchantiae Singer & Clémengon 59, 62 s

Gomphidius roseus (Nees : Fr.) Gillet 59,62 EcM

Hebeloma album Peck 62 EcM

H. crustuliniforme var. longicaudum (Pers. : Fr.) Quadraccia 62 EcM

Hebeloma dunense Corbiere & Heim 59,62 EcM

Hebeloma strophosum (Fr.) Saccardo 59, 62 EcM

Helvella cupuliformis Dissing & Nannfeldt 59, 62 sS?

Helvella ephippium Léveillé 59, 62 s?

Helvella minor (Vel.) S. Rauschert (=H. villosa) 59 s?

Hemipholiota populnea (Pers. : Fr.) M. Bon 59, 62 Sb

Hohenbuchelia grisea (Peck) Singer 59 SL

Hygrocybe coceinea (J. C. Sch. : Fr.) Kummer 62 s?

Source : MNHN, Paris

204 R. COURTECUISSE

Hygrocybe fornicata var. clivalis (Fr.) M. Bon

Hygrocybe glutinipes (J. E. Lange) Haller

Hygrocybe insipida Jensen & Moller

Hygrocybe laeta (Pers. : Fr.) Kummer

(incl. fo. curtip

pseudopsittacina M. Bon)

Hygrocybe quieta (Kühner) Singer

Hygrocybe reai (R. Maire) J. E. Lange

Hygrocybe strangulata (Orton) Svrcek

Hygrocybe vitellina (Fr.) P. Karsten

Hygrophorus hypothejus (Fr. : Fr.) Fr.

Hygrophorus lindtneri Moser

H. penarius var. barbatulus (Becker) M. Bon

Hymenochaete cinnamomea (Pers.) Bresadola

Inocybe brunneoatra (Heim) Orton

Inocybe cinerascentipes Kühner

Inocybe curreyi (Berk.) Saccardo

Inocybe flavella P. Karsten

Inocybe geraniolens M. Bon & Beller

Inocybe grata Weinman

Inocybe langei Heim

Inocybe microspora J. E. Lange

Inocybe napipes J. E. Lange

Inocybe obsoleta Romagnesi

Inocybe patouillardii Bresadola

Inocybe squamata J. E. Lange

Lactarius acerrimus Britzlemayer

Lactarius cyathuliformis M. Bon

Lactarius evosmus Kühner

Lactarius helvus (Fr. : Fr.) Fr.

Lactarius hysginus (Fr. : Fr.) Fr.

Lactarius lilacinus (Lasch) Fr.

Lactarius piperatus (Scop. : Fr.) S. F. Gray

Lactarius serifluus (De Cand. : Fr.) Fr.

Lactarius uvidus (Fr. : Fr.) Fr.

Lactarius volemus (Fr. : Fr.) Fr.

Lactarius zonarius (Bull. : Fr.)

(incl. fo. serobipes (Kühn. & Romagn.) Quadraccia)

Langermannia gigantea (Batsch : Pers.) Rostkov

Leccinum nucatum Lannoy & Estades

Lepiota acerina Peck

Lepiota ignipes Locquin ex M. Bon

Lepiota pseudofelina J. E. Lange

Lepista panaeolus var. nimbata

Lepista personata (Fr. : Fr.) Orton

Leucoagaricus georginae (W. G. Smith) Singer

Leucopaxillus paradoxus (Cost. & Duf.) Boursier

Limacella glioderma (Er.) Earle

Lycoperdon mammaeforme Pers. : Pers.

Lyophyllum ulmarium (Bull. : Fr.) Kühner

Macrolepiota puellaris (Fr) Moser

Melanoleuca cinereifolia (M. Bon) M. Bon

Microglossum viride (Pers. : Fr.) Gillet

's Möller, fo. griseopallida M. Bon, fo.

A A A A A A A A A A A

Source : MNHN. Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

Mycena adonis (Bull. : Fr.) S. F. Gray

Mycena aetites (Fr.) Quélet

ena amicta (Fr. : Fr.) Quélet

Mycena atropapillata Kühner & Maire

Mycena aurantiomarginata (Fr. : Fr.) Quélet

Mycena cinerella (P. Karsten) P. Karsten

Mycena flavescens Velenovsky

Mycena meliigena (Berk. & Cke.) Saccardo

ena olida Bresadola

ena pterigena (Er. : Fr.) Kummer

Mycenella bryophila (Voglino) Singer

Omphalina galericolor (Romagnesi) M. Bon

Omphalina lilacinicolor M. Bon

Omphalina obscurata (Kühner) ex Reid

Panaeolus olivaceus Moeller

Panellus serotinus (Schrad. : Fr.) Kühner

Panus conchatus (Bull. : Fr.) Fr.

Paxillus atrotomentosus (Batsch : Fr.) Fr.

Paxillus panuoides (Fr. : Fr.) Fr.

Peziza polaripapulata J. Moravec

Peziza pseudoammophila (M. Bon) ex Donadini

Phacocollybia arduennensis M. Bon

Phaeotellus rickenii (Singer ex Hora) M. Bon

Pholiota muricella (Fr.) M. Bon

Phylloporus rhodoxanthus (Schw.) Bresadola

Plicaria endocarpoides (Berk.) Rifai

Pluteus curtisii (Berk. & Br.) Saccardo

Pluteus depauperatus Romagnesi

Pluteus exiguus (Patouillard) Saccardo

Pluteus godeyi Gillet

Pluteus hispidulus (Fr. : Fr.) Gillet

Pluteus luctuosus Boudier

Pluteus olivaceus Orton

Pluteus thomsonii (Berk. & Br.) Dennis

Porphyrellus porphyrosporus (Fr.) Gilbert

Psathyrella bipellis (Quélet) A. H. Smith

Psathyrella canoceps (Kauffmann) A. H. Smith

Psathyrella hirta Peck

Psathyrella lutensis (Romagn.) Watl. & Richards.

Psathyrella vinosofulva Orton

Psilocybe apelliculosa Orton

Psilocybe graminicola M. Bon

Pulverolepiota pulverulenta (Huijsman) M. Bon

Ramicola sumptuosa (Orton) Watling

Resinomycena saccharifera (B. & Br.) Redhead

Rhodocybe gemina (Er.) Kuyper & Noordeloos

Rhodotus palmatus (Bull. : Fr.) R. Maire

Rugosomyces fallax (Peck) M. Bon

Russula amoenicolor Romagnesi

Russula anatina Romagnesi

Russula anthracina Romagnesi

(incl. var.carneifolia Romagnesi, var.insipida Roma-

gnesi)

205

Source : MNHN. Paris

206 R. COURTECUISSE

Russula carpini Girard & Heinemann

(incl. fo. tenella Bon)

Russula citrina Gillet

Russula decipiens (Singer) Kühner & Romagnesi

(incl. var. ochrospora Blum)

Russula foetens (Pers. : Fr.) Fr.

Russula gracillima J. Schaeffer

Russula illota Romagnesi

Russula laurocerasi Melzer

Russula lilacea Quélet

Russula lutensis Romagn. & Legal

Russula maculata Quélet

Russula melitodes Romagnesi

Russula melliolens Quélet

Russula mesospora Singer

Russula olivacea (J. C. Sch.) Pers.

Russula postiana Romell

Russula pseudocavipes M. Bon

Russula puellula Ebbensen & J. Schaeffer

Russula rubroalba (Singer) Romagnesi

Russula sororia Fr.

Russula subrubens (J. E. Lange) M. Bon

Russula subterfurcata Romagnesi

Russula urens Romell

Russula veternosa Fr.

Rutstroemia americana (Durand) White

Rutstroemia sydowiana (Rehm) White

Saccoblastia farinacea (v. Hóhnel) Donk

Sericeomyces serenus (Fr.) Heinemann

Sericeomyces sericeus (Cool) Contu

Stropharia semiglobata (Batsch : Fr.) Quélet

Tazzetta ochracea (Boudier)

Thelephora palmata (Scop. : Fr.) Fr.

Tricholoma bresadolanum Clémengon

Tricholoma columbetta (Fr. : Fr.) Kummer

Tricholoma psammopus (Kalchbr.) Quélet

Tricholoma pseudonictitans M. Bon

Tricholoma ustaloides Romagnesi

Tricholoma vaccinum (J. C. Sch. : Fr.) Kummer

Volvariella bombycina (J. C. Sch. : Fr.) Singer

Volvariella parvula (Weinmann) Spegazzini

Xerocomus porosporus Imler

229 espèces

EcM

Source : MNHN. Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

LISTE ROUGE DE NIVEAU II

CATÉGORIE 4, ESPÈCES POTENTIELLEMENT MENACÉES

OU VULNÉRABLES

a) espèces rares ou très rares, sans tendance manifeste actuelle à se raréfier

et venant dans des habitats non spécialement menacés pour le moment ou

207

b) espèces connues d’une seule récolte dans la région, de ce fait potentiellement menacées

(surtout dans le cas de stations sensibles ou vulnérables)

Agaricus aestivalis (Möller) Pilät

Agaricus annae Pilát

Agaricus augustus Fr.

(incl. var. perrarus (Schulzer)M.Bon & Cappelli)

Agaricus bohusii M. Bon

Agaricus fuscofibrillosus (Möller) Pilát

Agaricus porphyrocephalus Möller

‘Agaricus purpurellus (Möller) Möller

Agar omagnesii Wasser

Agaricus rubelloides M. Bon

Agaricus vaporarius (Pers.) Moser ex Cappelli

Agrocybe arenicola (Berk.) Singer

Agrocybe molesta (Lasch) Singer (=4.dura)

wakefieldiae Boidin & Beller

s (Orton) M. Bon

Alnicola spadicea (Reid) M. Bon

Alnicola subconspersa (Kühner ex Orton) M. Bon

Anellaria phalaenarum (7 Panaeolus antillarum)

Anellaria semiovata (Sow. : Fr.) Pears. & Dennis

Artomyces pyxidatus (Pers. : Fr.) Jülich

Ascobolus geophilus Seaver

Athelopsis lembospora (Bourdot) Oberwinkler

Auriculariopsis ampla (Léveillé) R. Maire

Bjerkandera fumosa (Pers. : Fr.) P. Karsten

Bolbitius aleuriatus (Fr. : Fr.) Singer

Bolbitius reticulatus (Pers. : Fr.) Ricken

Boletus depilatus Redeuilh

Boletus persoonii M. Bon

Boletus pseudoregius Estades

Botryobasidium danicum J. Eriksson & Hjortstam

Bovista aestivalis Er.

Bovista limosa Rostrup

Bovista pusilla Batsch : Pers.

Caloscypha fulgens (Pers.) Boudier

Calvatia cyathiformis (Bosc) Morgan

Cantharellus amethystinus (Quélet) Saccardo

(incl. var.substypticus M.Bon)

Cheimonophyllum candidissimum (B. & C.) Sing.

Clathrus archeri (Berk.) Dring

Clavaria argillacea fo. obtusata (Boudier) Favre

Clavaria argillacea var. brevispora Corner

59, 62

VOVRAVNVNAN nun

a momen

P 22985

DAL

SiS

Source : MNHN, Paris

208 R. COURTECUISSE

Clavaria asterospora Patouillard

Clavaria daulnoyae Quelet

Clavaria tenuipes Berk. & Br.

Clavulinopsis fusiformis (Sow. : Fr.) Corner

Clavulinopsis laeticolor (Berk. & Br.) Petersen

Clitocybe incomis (P. Karsten) Orton

Clitocybe inornata (Sow. : Fr.) Gillet

C. phaeophthalma var. werneri (Mal.) Quadracc.

Clitopilus seyphoides (Fr. : Fr.) Singer

Collybia alcalivirens Singer

Collybia impudica (Fr.)Singer

Collybia racemosa (Pers. : Fr.) Quélet

Collybia tuberosa (Bull. : Fr.) Kummer

Conocybe dumetorum (Velenovsky)Svreek

Conocybe lobauensis Singer & Hausknecht

Conocybe piloselloides Watling

Conocybe pubescens (Gillet)Kühner

Coprinus bisporiger Orton

Coprinus cineratus Quélet

Coprinus cinereus (J. C. Sch. : Fr.) S. F. Gray

Coprinus echinosporus Buller

Coprinus erythrocephalus (Léveillé)Fr.

Coprinus macrocephalus (Berkeley)Berkeley

Cordyceps capitata (Holmskj. : Fr.) Link

Cordyceps sphecocephala

(incl. fo. dittmarii (Quelet))

Cortinarius alnetorum (Vel.) Moser

Cortinarius alneus (Moser) Moser

Cortinarius balteatus (Fr.) Er.

Cortinarius bicolor Cooke

Cortinarius bovinus Fr.

Cortinarius caerulescens (J. C. Sch.) Fr.

Cortinarius cinnamomeobadius (Henry)Moser

Cortinarius cinnamomeolutescens Henry

Cortinarius cinnamomeus (L. : Fr.) Fr.

Cortinarius collinitus (Sow. : Fr.) Fr.

Cortinarius epsomiensis Orton

Cortinarius fraudulosus Britz.

(incl. var. radicosus Reumaux)

Cortinarius glaucopus (J. C. Sch. : Fr.) Fr.

(incl. var.olivasceus Mos., var. submagicus Bon & Gau-

gué)

Cortinarius hercynicus (Pers.) Moser

Cortinarius herpeticus Er.

Cortinarius junghuhnii Fr.

Cortinarius palustris (Moser) Nezdoiminogo

Cortinarius romagnesii Henry

issimus Kühner & Romagnesi

Cortinarius sphagnogenus (Moser) Nezdoiminogo

Cortinarius stemmatus Fr.

Cortinarius subanthracinus Henry

Source : MNHN. Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

Cortinarius subbalaustinus Henry

Cortinarius venetus (Fr.)Fr.

Crepidotus sphaerosporus (Pat.) J. E. Lange

Crepidotus subverrucisporus Pilát

Crepidotus versutus Peck

Cuphophyllus berkeleyii (Orton & Watling) Bon

Cuphophyllus fuscescens (Bresadola) Bon

Cystolepiota moelleri Knudsen

Dacrymyces estonicus Raitviir

Dacrymyces macnabbii Reid

Echinoderma echinaceum (J. E. Lange) M. Bon

Elaphomyces granulatus Fr. : Fr.

Entoloma cephalotrichum (Orton) Noordeloos

Entoloma chloropolium (Fr.) Quélet

Entoloma helodes (Fr.)Kummer

Entoloma hirtipes (Schum. : Fr.) Moser

Entoloma incarnatofuscescens (Britz.) Noordeloos

Entoloma juncinum (Kühn. & Romagn.) Noord.

Entoloma lividocyanulum Noordeloos

Entoloma pallescens (P. Karsten) Noordeloos

Entoloma rusticoides (Gillet) Noordeloos

Entoloma sericeoides (J. E. Lange) Noordeloos

Entoloma serrulatum (Fr. : Fr.) Hesler

Entoloma undatum (Quélet)Moser

(incl. var. viarum (Romagnesi) Courtecuisse)

Entoloma undulatosporum Noordeloos

Epichloe typhina (Pers. : Fr.) Tulasne

Episclerotium sclerotipus (Boudier) Kohn

Erythricium laetum (Karst.) J. Eriksson & Hjortst.

Fimaria cervaria (Phillips) van Brummelen

Flammulaster speireoides (Romagnesi) Watling

Funalia trogii (Berk.) Bondarzew & Singer

Galerina bresadolana M. Bon

Galerina camerina (Fr.) Kühner

Galerina karstenii A. H. Smith & Singer

Galerina muricellospora Atkinson

Galerina praticola (Moeller) Bas

Galerina salicicola Orton

Galerina triscopa (Fr.)Kühner

Geastrum pectinatum Pers. : Pers.

Geopora clausa (Tul. & Tul.)Burdsall

Gerronema postii (Fr.) Singer

Godronia ribis (Fr. : Fr.) Seaver

Hebeloma cavipes Huijsman

Hebeloma claviceps (Fr.) Kummer

Hebeloma eburneum Malengon

Hebeloma ochroalbidum Bohus

Hebeloma pusillum J, E. Lange

(incl. var. longisporum Bruchet)

Hebeloma subcaespitosum var. psammicola (Bohus) Bohus

Hemimycena mairei (Gilbert) Singer

(inel. var. microspora M.Bon)

Hemipholiota heteroclita (Fr. : Fr.) M. Bon

209

wu uuu uuuuutuu

QUE

wu Uu uuuuuuutuuuduuouu

Source : MNHN. Paris

210 R. COURTECUISSE

Hemipholiota oedipus (Cooke) M. Bon

(incl. var. chilensis Singer)

Hygrocybe aurantiolutescens fo. subconica Bon

Hygrocybe ceracea (Wülf. : Fr.) Kummer

(incl. var. vitellinoides (Bon) Bon et fo. rubella (Bon)

Bon)

Hygrocybe chlorophana (Fr. : Fr.) Wünsche

(incl. var. aurantiaca Bon)

Hygrocybe cinereifolia Courtecuisse & Priou

Hygrocybe citrinofusca (Favre) M. Bon

Hygrocybe conica var. chloroides (Malengon) Bon

Hygrocybe konradii var. pseudopersistens M. Bon

Hygrocybe langei Kühner (=H. acutoconica)

Hygrocybe moseri M. Bon

Hygrocybe subminutula Murrill

Hygrophoropsis fuscosquamulosa Orton

Hygrophorus carpini Gróger

Hygrophorus leucophaeus

Hygrophorus persoonii Arnolds

Hymenochaete subfuliginosa Bourdot & Galzin

Hymenogaster vulgaris Tulasne

Hypholoma capnoides (Fr. : Fr.)

Hypholoma laeticolor (Moeller) Orton

Hypholoma polytrichi (Fr. : Fr.) Ricken

Hypholoma udum (Pers. : Fr.) Kühner

Hypocrea rufa (Pers. : Fr.) Fr.

Hypomyces aurantius (Pers.) Tul.

Inocybe atripes Atkinson (=I. tenebrosa)

Inocybe auricomella Kühner

Inocybe calamistrata (Fr. : Fr.) Gillet

Inocybe fibrosoides Kühner & Boursier

Inocybe fulvida var. subserotina M. Bon

Inocybe geophylla var. violacea Patouillard

Inocybe geophylla var. fulva Patouillard

Inocybe incarnata Bresadola

Inocybe jacobi Kühner

Inocybe oblectabilis (Britz.) Saccardo

(incl. fo. decemgibbosa Kühner & Boursier)

Inocybe obscuroides Orton

(incl. var. marginata M. Bon)

Inocybe ovatocystis Kühner

Inocybe ovoideocystis Métrod

Inocybe perlata (Cooke)Saccardo

Inocybe phaeoleuca fo. minor M. Bon

Inocybe pholiotinoides Romagnesi

Inocybe piriodora (Pers. : Fr.) Kummer

Inocybe pisciodora Donadini & Riousset

Inocybe pseudohaemacta M. Bon & Courtecuisse

Inocybe pudica Kühner

Inocybe rufuloides M. Bon

Inocybe subpelargonium Beller

Inocybe xanthomelas Kühner & Boursier

lodophanus carneus (Pers.) Korf

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

raria tortilis (Bolt.) Cooke

orymaria glareosa (Favre) Watling

Lacrymaria pyrotricha (Holmskj.) Moser

Lactarius camphoratus (Bull. : Fr.) Fr.

Lactarius cremor Fr.

Lactarius flexuosus (Fr. : Fr.) S. F. Gray

Lactarius fuliginosus (Fr. : Fr.) Fr.

(incl. var. albipes (J. E. Lange) ex M. Bon

Lactarius mollis Reid

Lactarius omphaliformis Romagnesi

Lactarius pallidus (Pers. : Fr.) Fr.

Lactarius pterosporus Romagnesi

Lactarius roseozonatus (von Post) Bataille

Lactarius ruginosus Romagnesi

Lactarius spinosulus Quélet

Lactarius subumbonatus Lindgren

Lagarobasidium detriticum (Bourd. & Galz.) J. Eriksson €

Ryvarden,

Leccinum brunneobadium (Blum) Lannoy & Estades

Leccinum olivaceosum Lannoy & Estades

Leccinum schistophilum M. Bon

Lepiota bickhamensis Orton

Lepiota boudieri Bresadola

Lepiota echinella Quélet & Bernard

Lepiota felina (Pers.) Quélet

Lepiota fulvella Rea

Lepiota fuscovinacea Möller & J. E. Lange

Lepiota josserandii M. Bon & Boiffard

Lepiota kuehneri Huijsman ex Hora

Lepiota rhodorrhiza Romagn. & Locqu. ex Orton

Lepiota subalba Kühner

Lepiota sublaevigata M. Bon & Boiffard

Lepista panaeolus (Fr.) P. Karsten

Leptosporomyces fuscostratus (Burt) Hjortstam

Leucoagaricus badhamii (Berk. & Br.) Singer

Leucoagaricus carneifolius (Gillet) Wasser

Leucoagaricus densifolius (Gillet) M. Bon

Leucoagaricus macrorrhizus (Locquin) ex Horak

Leucoagaricus pinguipes (Pearson) M. Bon

Leucoscypha erminea (Bomm. & Rouss.) Boudier

Limacella guttata (Hoffm. : Fr.) Konr. & Maubl.

Lopharia spadicea (Pers. : Fr.) Boidin

Lyophyllum caerulescens Clémençon

Lyophyllum connatum (Schum. : Fr.) Singer

Lyophyllum leucophaetum (P. Karst.) P. Karsten

Macrolepiota konradii (Huijsman ex Orton) Moser

Marasmiellus vaillantii (Pers. : Fr.) Singer

Marasmius anomalus Lasch

Marasmius curreyi Berk. & Br.

Marasmius undatus (Berk.) Fr.

Marasmius wynneae Berk. & Br.

Melanoleuca albifolia Boekhout

Melanoleuca graminicola (Vel.) Kühner & Maire

59, 62

211

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Source : MNHN, Paris

212 R. COURTECUISSE

Melanoleuca langei (Boekhout) M. Bon

Melanoleuca leucophylloides (M. Bon) M. Bon

Melanoleuca nivea Métrod ex Boekhout

Melanoleuca pseudoluscina (M. Bon) ex M. Bon

Melanophyllum haematospermum (Bull. : Fr.) Kreisel

Melanotus horizontalis (Bull.) Orton

Micromphale foetidum (Sow. : Fr.) Singer

Mucronella calva (Alb. & Schw. : Fr.) Fr.

Mycena abramsii Murrill

Mycena ammoniaca (Fr.) Quélet

Mycena chlorantha (Fr. : Fr.) Kummer

(incl. fo. caespitosa Courtec. & Guinb., var. bispora Mal.)

Mycena crocata (Schrad. : Fr.) Kummer

Mycena diosma Krieglsteiner & Schwöbel

Mycena pearsoniana Dennis

Mycena pseudocorticola Kühner

Mycena vulgaris (Pers. : Fr.) Kummer

Mycoacia aurea (Fr. : Fr.) J. Eriksson & Ryv.

Mycoacia fuscoatra (Fr. : Fr.) Donk

Myxarium galzinii (Bres.) Wojewoda

fyxarium podlachicum (Bresadola) Raitviir

Nectria discophora (Mont.) Mont

Nectria leptosphaeriae Niessl

Oligoporus leucomalellus (Murrill) Gilbertson & Ryv.

Omphalina demissa (Fr. : Fr.) Quélet

Omphalina hepatica (Fr.) Orton

Omphalina obatra (Favre) Orton

Otidea alutacea (Pers.) Massee

Otidea onotica (Pers. : Fr.) Fuckel

Oudemansiella badia (Quélet) Moser

Oudemansiella pudens (Pers.) Pegler & Young

Panaeolina castaneifolia (Murrill) M. Bon

Panaeolus ater (J. E. Lange)Kühn. & Romagn. ex M. Bon

Panaeolus campanulatus (L. : Fr.) Quélet

Panaeolus dunensis M. Bon & Courtecuisse

Paxillus rubicundulus Orton

Pellidiscus pallidus (Berk. £ Br.) Donk

Peziza ammophila Dur. 8: Mont.

a ampelina Quélet

Peziza arvernensis Boudier

Peziza buxea Quélet

Peziza micropus Pets. : Fr.

Peziza proteana (Boudier) Seaver

Phaeomarasmius erinaceus (Fr.) Kühner

Phanerochaete aculeata Hallenberg

Pholiota abstrusa (Fr.) Singer

Pholiota apicrea (Fr.) Singer

Pholiota flavida (J. C. Sch. : Fr.) Singer

Pholiotina hadrocystis (Kits van Waveren) Courtecuisse

Pholiotina mairei (Kühner) ex Kühner & Watling

Pholiotina striaepes (Cooke) Moser

Pholiotina utriformis (Orton) M. Bon

Pluteus alborugosus Kühner

59, 62

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

Pluteus aurantiorugosus (Trog.) Saccardo

Pluteus boudieri Orton

Pluteus ephebeus (Fr. : Fr.) Gillet

Pluteus murinus Bresadola

Pluteus pellitus (Pers. : Fr.) Kummer

Pluteus petasatus (Fr.) Gillet

Pluteus pseudorobertii Moser & Stangl

Pluteus punctipes Orton

Pluteus seticeps (Atkinson) Singer

Poronia erici Lohmeyer & Benkert

Protodontia subgelatinosa (P. Karsten) Pilát

Psathyrella barlae (Bresadola) A. H. Smith

Psathyrella casca (Fr.) Konrad & Maublanc

Psathyrella cernua (Vahl : Fr.) Moser ex Hirsch

Psathyrella cotonea (Quélet) Konrad & Maublanc

yrella fusca (Schum.) Pearson

ina (Bull. : Fr.) Pearson & Dennis

£ fo. clavigera Kits van Waveren

Psathyrella infida Quélet

Psathyrella leucotephra (Berk. & Br.) Orton

Psathyrella maculata (Parker) Moser

Psathyrella minutissima Kits van Waveren

Psathyrella niveobadia (Romagnesi) Moser

Psathyrella noli-tangere (Fr.) Pearson & Dennis

Psathyrella olympiana A. H. Smith

Psathyrella pennata (Fr. : Fr.) Singer

Psathyrella phaseolispora Arnolds

Psathyrella populina (Britz.) Kits van Waveren

Psathyrella pygmaea (Bull.) Singer

Psathyrella romagnesiana M. Bon

Psathyrella romseyensis Kits van Waveren

Psathyrella trivialis Arnolds

Pseudoclitocybe expallens (Pers. : Fr.) Moser

Pseudohydnum gelatinosum (Scop. : Fr.) Karsten

Psilocybe muscorum (Orton) Moser

Psilocybe pratensis (Orton) Orton

Pterula multifida Fr.

Ptychoverpa bohemica (Krombholz) Boudier

Pulcherricium caeruleum (Schrad. : Fr.) Parmasto

Pulveroboletus lignicola (Kallenbach) Pilát

Pycnoporus cinnabarinus (Jacq. : Fr.) P. Karsten

Ramicola haustellaris fo. effugiens (Q.) Courtec.

Ramicola laevigata (Favre) Watling

Ramsbottomia macracantha (Boudier) Benkert et T. Schuma-

cher

Rhizopogon vulgaris (Vitt.) M. Lange

Rhodocybe popinalis (Fr. : Fr.) Singer

(incl. fo. insititia (M. Bon) Courtecuisse)

Rugosomyces ionides (Bull. : Fr.) M. Bon

Russula acrifolia Romagnesi

Russula adusta (Pers. : Fr.) Fr.

Russula albonigra (Krombholz) Fr.

(incl. fo. pseudonigricans Romagnesi)

213

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Kalte

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Source : MNHN, Paris

214 R. COURTECUISSE

Russula aurea Pers.

Russula azurea Bresadola

Russula brevis Romagnesi

Russula carminea (J. Schaeffer) ex Romagnesi

Russula claroflava Grove

Russula cremeoavellanea Singer

(incl. fo. laeticolor)

Russula cutefracta Cooke

Russula duportii Phillips

Russula emeticicolor (J. Schaefler) Singer

Russula faginea Romagnesi

Russula farinipes Romell

Russula fuscorubra (Bresadola) Singer

Russula fuscorubroides M.Bon

(inel. var. alba M. Bon)

Russula insignis Quélet

Russula knauthii (Singer) Kühner & Romagnesi

Russula laricina Velenovsky

Russula lateritia Quélet

Russula mollis Quélet

Russula odorata Romagnesi

(incl. var. lilacinicolor (Blum) Romagnesi)

Russula pseudoaeruginea (Romagn.) Romagn. ex Kuyper &

Van Vuure

Russula puellaris var. abietina (Peck) M. Bon

Russula purpurea ss, Gillet

Russula queletii Fr.

Russula raoultii Quélet

Russula rhodella Gilbert

Russula romellii R. Maire

Russula rubra (Lam.) Fr.

Russula sericatula Romagnesi

Russula solaris Ferdinansen & Winge

Russula sphagnophila Kauffmann

(incl. var. pallida (J, E. Lange) M. Bon, var. subheteros-

perma Singer)

Russula subfoetens W. G. Smith

Russula sublaevispora (Romagnesi) ex Romagnesi

Russula virescens (J. C. Sch.) Fr.

Saccobolus obscurus (Cooke) Phillips

Sarcoscypha coccinea (Jacq. : Fr.) Lambotte

Scutellinia armatospora Denison

Scutellinia kerguelensis (Berk.) O. Kuntze

Scutellinia legaliae Lohmeyer & Häffner

Scutellinia setosa (Nees : Fr.) O. Kuntze

Sparassis crispa (Wülf. : Fr.) Fr.

Sphaerobolus stellatus Tode : Pers.

Sphaerosporella brunnea (Alb. & Schw. : Fr.) Svrcek &

Kubicka

Steccherinum bourdotii Saliba & David

Strobilomyces floccopus (Vahl : Fr.) P. Karsten

Stropharia inuncta (Fr. : Fr.) Quélet

Stropharia pseudocyanea (Desm. : Fr.) Morgan

Source : MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

(incl. var. virginea (J. E. Lange)

Subulicystidium perlongisporum Boidin & Gilles

Suillus luteus (L. : Fr.) Roussel

Syzygospora tumefaciens (Ginns & Sunh.) Ginns

Tephrocybe confusa (Orton) Orton

Tephrocybe fusispora (Hora) Moser

Tephrocybe inodora (Kühner) M.Bon

Tephrocybe palustris (Peck) Donk

Tephrocybe platypus (Kühner) Moser

Tephrocybe putidella (Orton) Orton

Thelephora anthocephala (Bull. : Fr.) Pers.

Tremella obscura (Olive) M. P. Christiansen

Tricholoma acerbum (Bull. : Fr.) Quélet

Tricholoma atrosquamosum (Chevalier) Saccardo

Tricholoma bufonium (Pers. : Fr.) Gillet

Tricholoma cingulatum (Almf.) Jacobasch

Tricholoma portentosum (Fr. : Fr.) Quelet

Tricholoma sciodes (Pers.) Martin

(incl. var. virgatoides M. Bon)

Tricholoma sejunctum (Sow. : Fr.) Quélet

(incl. var, fagetorum M. Bon & Bouteville)

Tricholomopsis flammula Métrod

Trichophaeopsis bicuspis (Boudier) Korf & Erb

Tubaria albostipitata Reid

Tubaria confragosa (Fr.) Kühner ex Harmaja

Tuber maculatum Vittadini

Tuber uncinatum Chatin

Tulostoma melanocyclum Bresadola

Tylopilus felleus (Bull. : Fr.) P. Karsten

Uthatobasidium fusisporum (Schroter) Donk

Verpa conica (Müll. : Fr.) Swartz

Xerocomus armeniacus (Quélet) Quélet

Xerocomus badiorufus (Heim) M. Bon

Xylaria oxyacanthae Tulasne

415 espèces

CATÉGORIE 5, ESPÈCES SENSIBLES

215

(bien que non menacées pour le moment dans la région Nord-as-de-Calais),

à surveiller en raison d'une valeur patrimoniale importante dans d'autres régions d'Europe.

Agaricus campestris L. : Fr.

(incl. vars.fuscopilosellus (Möller) Pilát, isabellinus

(Möller) Pilát, squamulosus (Rea) Pilát)

Agaricus phaeolepidotus (Moeller) Moeller

Amanita crocea (Quélet) Melzer

Amanita franchetii Boudier

Amanita gemmata (Paulet) Bertillon

Amanita strobiliformis (Paulet) Bertillon

Arrhenia spathulata (Er. : Fr.) Redhead

59, 62

Source : MNHN, Paris

216 R. COURTECUISSE

Boletus calopus Pers. : Fr.

Cantharellus cibarius (L. : Fr.) Fr.

Cantharellus cinereus (Pers. : Fr.) Fr.

Cantharellus tubiformis Fr. : Fr.

(incl. var. lutescens)

Ceriporia purpurea (Haller : Fr.) Donk

Clavaria acuta (J. C. Sch. : Fr.)

Clavaria vermicularis Sw. : Fr.

Clavulicium vinososcabens (Burt) Pouzar

Collybia distorta (Fr.) Quélet

Coltricia perennis (L. : Fr.) S. F. Gray

Coprinus picaceus (Bull. : Fr.) Fr.

Cortinarius amoenolens Henry ex Orton

Cortinarius anthracinus (Fr.) Fr.

Cortinarius bolaris (Pers. : Fr.) Fr.

Cortinarius caninus (Bolt. : Fr.) Fr.

Cortinarius causticus Fr.

Cortinarius cephalixus Fr.

Cortinarius citrinus J. E. Lange ex Orton

Cortinarius cyanites Fr.

Cortinarius emollitus Fr.

Cortinarius helvelloides (Fr. : Fr.) Fr.

Cortinarius integerrimus Kühner

Cortinarius laniger (Fr. : Fr.) Fr.

Cortinarius olivaceofuscus Kühner

Cortinarius phaeophyllus P. Karsten

Cortinarius pholideus (Fr. : Fr.) Fr.

Cortinarius polymorphus Henry

Cortinarius psammocephalus (Bull.) Fr.

Cortinarius purpurascens (Fr.) Fr.

Cortinarius rufoolivaceus (Pers. : Fr.) Fr.

Cortinarius sanguineus (Wülf. : Fr.) S. F. Gray

Cortinarius sodagnitus Henry

Cortinarius sphagneti Orton

Cortinarius talus Fr.

Cortinarius violaceus (L. : Fr.) Fr.

Cortinarius vulpinus (Vel.) Henry

Craterellus cornucopioides (L. : Fr.) Pers.

Cystolepiota bucknallii (B. & Br.) Sing. & Clg.

Dacryobolus sudans (Alb. & Schw. : Fr.) Fr.

Dichomitus campestris (Quélet) Dom. & Orl.

Entoloma dichroum (Pers. : Fr.) Kummer

Entoloma lampropus (Fr. : Fr.) Hesler

Entoloma lividoalbum (Kühn. & Rom.) Kubicka

Entoloma lividum (Bull.) Quélet

Exidia cartilaginea Lund. $: Nannf.

Exidia thuretiana Lév.

Exidia truncata Fr. : Fr.

Faerberia carbonaria (Alb. & Schw. :

Fistulina hepatica (J. C. Sch. : Er.) Fr.

Flammulaster muricatus (Fr. : Fr.) Watling

Ganoderma adspersum (Schulz.) Donk

Grifola frondosa (Dicks. : Fr.) S. F. Gray

T.) Pouz.

59, 62

Source

MNHN, Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS) 217

Gymnopilus sapineus (Sow. : Fr.) R. Maire 59, 62 SL

Gymnopilus stabilis (Weinm.) Kühn. & Rom. ex Bon 62 SL

Hebeloma fragilipes Romagnesi 59 EcM

Hebeloma helodes Favre 62 EcM

Hebeloma tomentosum (Moser) Grog. & Zschies. 62 EcM

Hebeloma velutipes Bruchet 62 EcM

Helvella leucomelaena (Pers.) Nannfeldt 59, 62 s

Hygrophorus cossus (Sow. : Fr.) Fr. 59, 62 EcM

Hygrophorus eburneus (Bull. : Fr.) Fr. 59, 62 EcM

(incl. fo. carneipes Kühner)

Hygrophorus nemoreus (Pers. : Fr.) Fr. 59,62 EcM

Hymenochaete corrugata (Fr. : Fr.) Lév. 62 SL

Hyphoderma obtusiforme J. Eriksson & Strid 59 SL

Hyphodermella corrugata (Fr.) J. Erikss. & Ryv. 59 SL

Hyphodontia nespori (Bres.) J. Eriksson 62 SL

Hypholoma ericaeoides Orton 59, 62 s

Hypholoma ericaeum (Pers. : Fr.) Singer 59, 62 s

Hypholoma subericaeum (J. C. Sch. : Fr.) 59, 62 S

Inocybe adaequata (Britz.) Saccardo 59, 62 EcM

Inocybe arenicola (Heim) M. Bon 62 EcM

(incl. fo. albida M. Bon)

Inocybe auricoma (Batsch) Fr. 59 EcM

Inocybe bongardii (Weinmann) Quélet 59, 62 EcM

Inocybe glabripes Ricken 59 EcM

Inocybe godeyi Gillet 62 EcM

Inocybe grammata Quélet 59 EcM

Inocybe griseolilacina J. E. Lange 59,62 EcM

Inocybe hystrix (Fr.) P. Karsten 59, 62 EcM

Inocybe petiginosa (Fr. : Fr.) Gillet 59, 62 EcM

Inocybe proximella P. Karsten 62 EcM

Inocybe psammophila M. Bon (=Lserotina) 59, 62 EcM

Inocybe squarrosa Rea 59, 62 EcM

Inonotus dryadeus (Pers. : Fr.) Murrill 59, 62 SL

Inonotus hispidus (Bull. : Fr.) P. Karsten 59, 62 SL

Lactarius decipiens Quélet 59, 62 EcM

Lactarius fluens Boudier 59, 62 EcM

Lactarius glaucescens Crossland 59, 62 EcM

Lactarius lacunarum Romagnesi 59, 62 EcM

Lactarius mitissimus Fr. 59, 62 EcM

"tarius rubrocinctus Fr. 59, 62 EcM

num crocipodium (Letellier) Watling 59, 62 EcM

Leccinum duriusculum (Kalchbr. & Schulz.) Sing. 59, 62 EcM

Leccinum quercinum Watling 59, 62 EcM

Leccinum roseofractum Watling 62 EcM

Leccinum versipelle (Fr.) Snell 59, 62 EcM

Lepiota alba (Bres.) Saccardo 59, 62 s

Lepiota clypeolaria (Bull. : Fr.) Kummer 59, 62 s

Lepiota oreadiformis Velenovsky 62 s

Lepiota pseudohelveola Kühner ex Hora 62 Ss

(incl. var. sabulosa M. Bon)

Lepiota subincarnata J. E. Lange 59, 62 s

Leucoagaricus leucothites (Vittadini) Wasser 59, 62 S

Leucocoprinus brebissonii (Godey) Locquin 59, 62 s

Source : MNHN, Paris

218 R. COURTECUISSE

Lycoperdon echinatum Pers. : Pers.

Macrolepiota excoriata (J. C. Sch. : Fr.) Wasser

Melanoleuca schumacheri (Fr.) Singer

Meruliopsis taxicola (Pers. : Fr.) Bond.

Mitrophora semilibera (De Cand. : Fr.) Léveillé

Mitrula paludosa Fr. : Fr.

Mutinus caninus (Huds. : Pers.) Fr.

Mycena alba (Bresadola) Kühner

Mycena floridula (Fr.) P. Karsten

Mycena hiemalis (Osbeck) Quélet

Mycena pelianthina (Fr.) Quélet

Mycena pelliculosa (Fr. Ó) Quélet

Mycena stipata Maas Geesteranus & Schwöbel

Mycena vitraea (Fr. : Fr.) Quelet

Mycenella salicina (Velenovsky) Singer

Myxarium grilletii (Boudier) Reid

Nyctalis parasitica (Bull. : Fr.) Fr.

Omphalina barbularum (Romagnesi) M. Bon

Ossicaulis lignatilis (Pers. : Fr.) Redhead & Ginns

Perenniporia fraxinea (Bull. : Fr.) Ryvarden

Phaeolus schweinitzii (Fr.) Patouillard

Phanerochaete martelliana (Bres.) Erikss. & al.

Phellinus ferreus (Pers. : Fr.) Bourdot & Galzin

Phellinus ferruginosus (Schrad. : Fr.) Bourd. & Galz.

Phellinus robustus (P. Karsten) Bourd. & Galz.

Phellinus tremulae (Bond.) Bondarcev & Borisov

Phlebia subochracea (Bres.) J. Erikss. & Ryv.

Phlebia subserialis (Bourd. & Galz.) Donk

Phleogena faginea (Fr. : Fr.) Link

Pholiota jahnii Tjallingi & Bas

Pholiota lucifera (Lasch) Quélet

Pholiota tuberculosa (J. C. Sch. : Fr.) Kummer

Pisolithus arrhizus (Scop. : Pers.) Rauschert

Plicaturopsis crispa (Pers. : Fr.) Reid

Pluteus inquilinus Romagnesi

Pluteus leoninus (J. C. Sch. : Fr.) Kummer

Pluteus umbrosus (Pers. : Fr.) Kummer

Psathyrella atrolaminata Kits van Waveren

Pseudoclitocybe cyathiformis (Bull. : Fr.) Singer

Pseudocraterellus undulatus (Pers. : Fr.) Rausch.

Ripartites metrodii Huijsman

Russula amara Kucera

Russula brunneoviolacea Crawshay

Russula clariana Heim

Russula cuprea (Krombholz

Russula drimeia Cooke

Russula heterophylla (Fr. : Fr.) Fr.

Russula luteotacta Rea

Russula medullata Romagnesi

Russula pectinata (Bull.) Fr.

Russula pelargonia Niolle

Russula persicina Krombholz

Russula pseudointegra Arnoult & Ghoris

Source : MNHN. Paris

LISTE ROUGE DES CHAMPIGNONS (NORD-PAS-DE-CALAIS)

Russula puellaris Fr.

Russula sanguinaria (Schum.) S. Rauschert

Russula torulosa Bresadola

Russula turci Bresadola

Russula violeipes Quélet

Russula xerampelina (J. C. Sch.) Fr.

Stereum subtomentosum Pouzar

Stropharia melasperma (Bull. : Fr.) Quélet

Suillus bovinus (L. : Fr.) O. Kuntze

Suillus collinitus (Fr.) O. Kuntze

Suillus granulatus (L. : Fr.) Roussel

Suillus grevillei (Klotzsch) Singer

Suillus variegatus (Sow. : Fr.) O. Kuntze

Tephrocybe mephitica (Fr.) Moser

Thelephora caryophyllea (J. C. Sch. : Fr.) Fr.

Thelephora mollissima Pers. : Fr.

Thelephora penicillata (Pers. : Fr.) Fr.

Trametes pubescens (Schum. : Fr.) Pilát

Tricholoma argyraceum (Bull.) Saccardo

Tricholoma auratum Gillet

Tricholoma equestre (L. : Fr.) Quélet

Tricholoma pessundatum (Fr. : Fr.) Quélet

Tricholoma populinum J. E. Lange

Tricholoma saponaceum (Fr.) Kummer

Tricholoma scalpturatum (Fr.) Quélet

Tricholoma sulfureum (Bull. : Fr.) Kummer

Tricholoma ustale (Fr. : Fr.) Kummer

Tubaria pallidospora J. E. Lange

Tulostoma brumale Pers. : Pers.

Volvariella murinella (Quélet) Moser ex Courtec.

Xylaria longipes Nitschke

193 espèces

59, 62

219

Source : MNHN. Paris

Crytogamie, Mycol. 1997, 18 (3): 221-225 221

PHELLINUS ANCHIETANUS (BASIDIOMYCETES,

APHYLLOPHORALES) SP. NOV. FROM BRAZIL.

Cony DECOCK *and Leif RYVARDEN **

* Mycothèque de l'Université catholique de Louvain,

Place Croix du Sud 3, 1348 Louvain-la-Neuve,

Belgique (decock@mbla.ucl.ac.be)

** Department of Botany, Institute of Biology,

University of Oslo, P.O. Box 1045,

N-0316 Oslo, Norway (leif.ryvarden@bio.uio.no).

ABSTRACT: Phellinus anchieranus is described as a new species from Brazil. The species is charac-

terised by a resupinate habit, straight extra-hymenial setae, hooked hymenial setae and small

subglobose basidiospores.

KEYWORDS : Phellinus rufi-tinctus, Phellinus uncinatus, Phellinus undulatus, J. Rick, Brazil

RESUME: Une nouvelle espèce est décrite dans le genre Phellinus:Ph. anchietanus. Cette espèce est

caractérisée par un port résupiné, la présence de soies extrahyméniales et de soies hyméniales

terminées en crochet et des basidiospores subglobuleuses.

MOTS-CLÉS : Phellinus rufi-tinctus, Phellinus uncinatus, Phellinus undulatus, J. Rick, Brésil.

PRODUCTION

The Austrian-born mycologist J. Rick has made intensive collections of polypo-

res from Brazil. He described numerous new species, whose type specimens have been

revised by Rajchenberg (1987), and reported also a large number of species, mainly in his

serial papers “Poriae Riograndenses”, " Polypori Riograndenses”, " Polysticti Riogranden-

ses” and, posthumously, in the fourth volume of the monographic serial “Basidiomycetes

Eubasidii in Rio Grande do Sul, Brasilia” (Rick, 1960). His intensive work has appreciably

improved our knowledge of the South American polypores flora. The Rickis specimens

are preserved at Herbarium Anchieta (PACA), Sao Leopoldo, Brazil.

During a revision of some polypores specimens of the Rickis herbarium, the

authors came across one collection of a Phellinus species, identified under Poria chroma-

tica Berkeley & Cooke (Rick, 1960). The species is resupinate and have both hymenial and

extra-hymenial setae, the former with a slightly to distinctly hamate apex, besides small

(sub)globose basidiospores (< 5 um).

Within the resupinate species of Phellinus, none display the combination of the

characters described above. The species is therefore described as new.

Source : MNHN, Paris

222 C. DECOK & L. RYVARDEN

MATERIAL AND METHODS

Specimens are examined in Melzer’s reagent, KOH 4% and Lactic acid Cotton

blue. All microscopic measurements are done in Melzer’s reagent. Colour of basidiocarp

was described according to Kornerup & Wanscher (1981).

DESCRIPTION

Phellinus anchietanus C. Decock & Ryvarden sp. nov.

Fructificatio resupinata, pori facies umbrina, pori rotundi, 6-8 per mm, contextus

tenuissimus, brunneus, systema hypharum dimiticum, hyphae generatoriae hyalinae ad pal-

lide luteum, afibulatae, hyphae skeletales flavo-brunneae, crassitunicatae, aseptatae. Setae

inclusae in trama, ad 70 um longae, setae hymeniales ferrugineo-fuscae, conicus vel ventri-

cosae, apice acutae, rectae aut saepe curvatae vel hamatae, 14-20 x 6.2-8.5 um. Basidiospo-

rae subglobosae ad late ellipssoideae, crassetunicatae, non-dextrinoideae, pallidae luteae,

3.75-4.25 x 3-3.75 um.

Holotypus: Brazil, Sào Salvador, 1942, ad corticem arborum ignotus. Herbarium

Anchieta, Florae Brasiliae australis, Fungi Rickiani PACA 18770, leg. J. Rick.

The collection consists in a few fragments of a perennial, resupinate, adnate

fructification, reaching 60 x 25 mm. Margin slightly detached, yellowish (light yellow to

yellowish orange, 3A4-5 to 45-6), velutinous to fibrous. Old margin and tubes carbona-

ceous, black. General texture woody. Pore surface light brown (6D5, camel to cinnamon)

to brown (6E6, cocoa brown) with a greyish tint. Pores very small, round, 6-8/mm?,

dissepiments entire (to slightly lacerate on sloping part). Tube layer up to 6 mm high,

brown to dark brown (6-7E6-7), woody. Context woody, up to 2 mm high, brown (light

brown to brownish orange), on places separated from the context by a black line. Hyphal

system dimitic in both tubes and context. Generative hyphae hyaline to yellowish, thin-

walled, few branched 2-3 um wide, skeletal hyphae yellowish brown, thick-walled, (with

secondary septa), 3-5 um wide. Hyphae sub-parallel in the tube. Hymenial setae numerous,

conical to commonly ventricose, thick-walled, apex acute, straight or commonly slightly

to strongly hamate, (11.3)-14.6-21-(24) x (5.2)-6.2-8.4-(9.8) um, mono- or rarely

bi-rooted, yellowish brown, directly protruding through the hymenium or arising from an

hyphal-like stalk, parallel to the tramal hyphae, 9-23 long x 3-4.3 um width. Tramal setae

in the sterile margin and in the dissepiments, thick-walled, straight, parallel to the tramal

hyphae in the tubes, erected in the sterile margin, up to 70 um long, 4-7 um wide, yellowish

brown. Basidia not seen. Basidiospores (hyaline) to pale yellowish (pale yellowish brown

in mass), slightly thick-walled, broadly ellipsoid to subglobose, not dextrinoid, not

cyanophilic, 3.75-4.25 x 3-3.75 um.

Holotype: Brazil, Säo Salvador, 1942, on bark of an undetermined angiosperm.

Herbarium Anchieta, Florae Brasiliae australis, Fungi Rickiani PACA 18770, leg. J. Rick.

DISCUSSION

The combination of a resupinate habit, presence of tramal and hymenial setae,

the latter straight to commonly apically curved to distinctly hamate, and small, subglo-

Source : MNHN, Paris

PHELLINUS ANCHIETANUS SP NOV. 223

bose, coloured basidiospores are unique within the genus and make the species distinct.

Within the resupinate species of Phellinus, Ph. anchietanus is close to Ph. rufi-tinctus

(Berkeley £ Curtis ex Cooke) Patouillard. Both species possess hymenial and extra-

hymenial setae, the latter in the sterile margin and in the tube walls. Although, Ph.

rufi-tinctus differs from our species by longer (up to 35 um long) apically straight hymenial

setae and ellipsoid, thin-walled, hyaline basidiospores (Ryvarden & Johansen, 1980,

Larsen & Cobb-Poulle, 1990). Similar hooked setae are found in a few resupinate species

of Phellinus i.e. in Ph. undulatus (Murrill) Ryvarden and Ph. uncinatus Rajchenberg

(1987), but both species lack extra-hymenial setae. Ph. undulatus share with Ph. anchieta-

nus the same fruitbody, hamate hymenial setae and small subglobose, slightly thick-

walled, coloured basidiospores (Ryvarden & Johansen, 1980, David &Rajchenberg, 1985,

Loguercio-Leite & Wright, 1995). Ph. uncinatus has larger and dextrinoid basidiospores

which rules out immediately that species.

ACKNOWLEDGEMENTS: The authors express their sincere gratitude to Dr. Maria Salete Mar-

chioretto, Curator of the Herbarium Anchieta (PACA) for the loan of some of the Rickis specimens.

CD is grateful to Service fédéral des affaires Techniques, Scientifiques et Culturelles (SSTC) for

financial support (contract BCCM 94-98/10/003) and to Mr. J. De Brabandere, co-ordinator of the

Belgian Co-ordinated Collection of Micro-organisms (BCCM) for continuously supporting the

MUCL Culture Collection.

REFERENCES

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taxon 22(2); 285-325.

KORNERUP A. & WANSCHER J.H., 1981. Methuen handbbok of color, 3rd Edition: 1-282.

Larsen M. J. & Cobb-Poulle L. A., 1990 — Phellinus (Hymenochaetaceae). Synopsis

fungorum 3: 1-206.

LOGUERCIO-LEITE C. & WRIGHT J.E., 1995 — The genus Phellinus (Hymenochaetaceae) on the

island of Santa Catarina, Brazil. Mycotaxon 54: 361-388.

RAJCHENBERG M., 1987 — New South American Polypores. Mycotaxon 28(1): 111-118.

RAICHENBERG M., 1987 — Type studies of Polyporaceae (Aphyllophorales) described by J.

RICK. — Nordic journal of botany 7: 553-568.

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ceae, Boletaceae. Iheringia botánica 7: 193-295.

RYVARDEN L. & JOHANSEN I., 1980 — A Preliminary Polypore flora of East Africa. Fungiflora,

Oslo: 1-636

Source : MNHN, Paris

224 C. DECOK 8: L. RYVARDEN

Fig. 1. Phellinus anchietanus, holotype. a. Extra-hymenial setae; b. Hymenial setae; c. Basidiospores.

Scale bar = 10 um.

Source : MNHN. Paris

PHELLINUS ANCHIETANUS SP NOV. 225

Fig. 2. Phellinus anchietanus, holotype. a. Hymenial setae, scale bar = 25 um; b. Hymenial setae, scale

bar = 20 um.

Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1997, 18 (3): 227-231 227

CONTRIBUCION AL ESTUDIO DEL GENERO CORTINARIUS

EN ESPAÑA PENINSULAR. II Parte.

A. ORTEGA (*), A. BIDAUD (**) & R. MAHIQUES (***)

(*) Dpto. Biología Vegetal, Fac. Ciencias,

Univ. Granada, 18001 Granada (España)

(**) 70, Rue Edison. F-69330 Meyzieu (Francia).

(***) Societat Micologica Valenciana, Dr. Climent 26,

Quatretonda, 46837 Valencia (España).

RESUMEN: Se realiza un estudio de tres taxones de Cortinarius (Myxacium) poco conocidas en el

área mediterránea de España peninsular: Cortinarius barbatus (Batsch: Fr.) J.Melot, Cortinarius

croceocaeruleus (Pers: Fr.) Fr, Cortinarius croceocaeruleus var. meridionalis Bidaud, Ortega &

Mahiques var. nov.

RÉSUMÉ: Une étude de trois taxons du genre Cortinarius (Myxacium), peu connus dans l'aire

méditerranéenne de l'Espagne péninsulaire est proposée: Cortinarius barbatus (Batsch: Fr.) J.Melot,

Cortinarius eroceocaeruleus (Pers.: Fr.) Fr. et Cortinarius croceocaeruleus var. meridionalis Bidaud,

Ortega et Mahiques var. nov.

SUMMARY: This paper presents a study about three taxa of the genus Cortinarius (Myxacium),

little known in the mediterranean area of peninsular Spain: Cortinarius barbatus (Batsch: Fr.) Fr,

Cortinarius croceocaeruleus (Pers.: Fr.) Fr. and Cortinarius croceocaeruleus var. meridionalis Bidaud,

Ortega & Mahiques var. nov.

INTRODUCCION

En trabajos anteriores Ortega (1995), Ortega & Mahiques (1995 a,b) y Sanchez

et al. (1995) se realizaron estudios monograficos sobre el género Cortinarius en el area

mediterranea en los que se pudo comprobar el interés micológico de esta zona de la

península ibérica. Pues bien siguiendo con esta linea en el presente artículo damos cuenta

de la recolección bajo Quercus suber, Cistus div. sp. y Pinus sylvestris de tres taxones

prácticamente desconocidos para la micoflora ibérica.

Se realiza una descripción detallada de cada uno de estos taxones, a pesar de que

como sucede en el caso de Cortinarius croceocaeruleus (Pers.: Fr.) Fr. es un especie bien

conocida, no obstante creemos necesario aportar la descripción de nuestro material al

objeto de poner más claramente de manifiesto las diferencias existentes entre la variedad

tipo y la variedad meridionalis Bidaud, Ortega & Mahiques.

Source : MNHN, Paris

A. ORTEGA et al.

El material procede de algunas localidades de las provincias de Teruel y Valencia

y se encuentra depositado en el herbario de la Universidad de Granada (GDAC) y en el

herbario particular de R. Mahiques (MES).

La metodología y bibliografía básica son las clásicas en este tipo de estudios.

DESCRIPCIÓN DE ESPECIES

Cortinarius barbatus (Batsch: Fr.) J. Melot

= Cortinarius cristallinus Fr.

Bibl. et Icon. sel.: Brandrud er al., 1992: B 56.

Descripción: Píleo de 25-32 mm. de diám., convexo, con un amplio mamelón, de color

blanco y recubierto de un abundante escarchado n° veo que al desaparecer en la madurez

hace que el sombrero adquiera una tonalidad amarillento pajizo o amarillento ocráceo.

Láminas sinuosas amarillento ocráceas con la arista floconosa algo más pálida. Estipe de

35-50 x 6-8 mm., subfusiforme con la base atenuada subradicante, blanco de aspecto

sedoso y suavemente glutinoso. Carne blanca aunque se torna amarillento ocráceo. Olor

inapreciable a suavemente rafanoide. Sabor amargo en todas las partes del carpóforo. Sin

ninguna reacción química especial.

Esporas (5,5)6-7,5(8) X 4-4,5 um (Xm: 6,9 x 4,1 um; Q= L/I: 1,4-1,85; Qm: 1,67),

subovoides a elipsoides o subamigdaliformes, con ornamentación muy fina formada por

verrugas aisladas. Epicutis constituida por hifas gelificadas ( — 3um). Hipodermis con

hifas de hasta 20 um.

Material estudiado: VALENCIA: El Surars (Pinet), 660 m.s.n.m. Bosque mixto de Pinus

pinaster, Quercus suber y Cistus crispus en suelo arenoso. 29.X1.1993. Leg. R.Mahiques.

GDAC 41651 (MES 2153 sub Cortinarius rigens (Pers.: Fr.) Fr. ss. Marchand). Ibidem.

Bajo Quercus suber y Cistus salvifolius. 14.X1.1995. Leg. R. Mahiques. GDAC 41652

(MES 2625).

Observaciones: El pequeño porte de los basidiocarpos nos hizo pensar en un primer

momento en Cortinarius ochroleucus (Schaeff.: Fr.) Fr., del que se separa nuestro material

por poseer la epicutis con una importante capa de hifas gelificadas, mientras que en

Cortinarius ochroleucus es practicamente seca, por lo que habria que definirlo como una

forma grácil de Cortinarius barbatus, ya citado en España (Pais Vasco) como Cortinarius

cristallinus fo. gracilis Bres. por Garcia Bona (1994), sin embargo las medidas esporales

que aporta este autor (6,5-9,5 X 4,3-4,8 um) son bastante diferentes de las observadas en

nuestras colecciones.

Cortinarius croceocaeruleus (Pers.: Fr.) Fr.

Bibl. et Ico. sel.: Brandrud et al., 1992: B49

Descripción: Pileo de 30 mm. de diám., inicialmente campanulado, haciéndose convexo en

la madurez, de color azulado lilacino (mas marcado en la periferia) y blanquecino

brillante en la porción discal que adquiere con rapidez coloración amarillo limón, con la

superficie como escarchada de blanco. Cutícula viscosa y fibrilosa innata. Láminas

redondeadas o redondeado sinuosas, lilacinas con la arista más pálida, floconosa, entera

o finamente crenulada. Pie de 40 x 6-9 mm, cilíndrico, con la superficie blanquecina con

tonalidad ocrácea en la vejez, viscosa y brillante. Carne escasa, lilacina en las alas del píleo,

ápice y cortex del estipe, blanquecina en el resto, excepto en el pie (sobre todo en su base)

que es amarillento dorada. Olor poco definido. Sabor muy amargo tanto en la cutícula

Source : MNHN, Paris

CORTINARIUS EN ESPAÑA PENINSULAR 229

como en la carne. Sin ninguna reacción química destacable.

Esporas de 7-8,5 x (4,3)4,5-5,3 um (Xm: 7,7 x 4,8 um; Q= L/l: 1,4-1,7 (1,8); Qm:

1,58) ovoides a elipsoides o subamigdaliformes, con una ornamentación suave formada

por verrugas aisladas. Epicutis constituida por hifas gelificadas de 1,5-5 um.

Material estudiado: TERUEL: Mosqueruela. Bajo Pinus sylvestris. 14.1X.1996. Leg. R.

Mahiques. GDAC 41653 (MES 2847).

Observaciones: Se separa de la variedad meridionalis Bidaud, Ortega & Mahiques por su

menor porte, su hábitat y sus esporas de talla más reducida: 7-8,5 x (4,3)4,5-5,3 um.

En cuanto a su distribución indicar que aunque es una especie bien conocida en

la micoflora europea, no conocemos hasta la fecha ninguna referencia bibliográfica

española donde aparezca citada.

Cortinarius croceocaeruleus var. meridionalis Bidaud, Ortega € Mahiques var. nov.

Diagnosis latina: Nitide discernitur a Cortinarius croceocaeruleus var. croceocaeruleus in

eius maxima magnitudo: pileus 35-40 mm. diam., stipes 35-40 x 10-12 (15) mm.; habitat

eius invenitur inter peculiares vegetalium comunitates mediterraneas ac meridionales atque

super acida sedimenta et eorum esporae sunt maiores: 7,5-10 X 4,5-5,5 um. Typus in GDAC

herbarium n° 41654. Isotypus in MES herbarium n° 2545.

Descripción: Píleo de 35-50 mm. de diám., convexo, de color azulado pálido con la

super! como escarchada de blanco, aunque toma con rapidez tonalidad crema y

después crema amarillento. Cutícula viscosa, finamente fibrilosa innata en la periferia.

Láminas redondeado adnadas a sinuosas, violáceas con la arista más pálida, floconosa o

crenulada a aserrada. Pie de 0 x 10-12 (15) mm., fusiforme con la base adelgazada,

azulado pálido, después blanquecino y crema pálido al final del desarrollo, con la

superficie viscosa y brillante. Carne escasa, levemente azulada en las alas del sombrero y

base del estipe, crema a crema ocráceo en el resto. Olor farinoso aromático. Sabor muy

amargo tanto en la cutícula como la carne. Sin ninguna reacción química especial.

Esporas de 7,5-10 x 4,5-5,2 um (Xm: 8,8 x 4,9 um; Q= L/I: 1,7-1,9 (2) um; Qm:

1,8), elipsoidales oblongas con ornamentación suave formada por verrugas aislada.

Epicutis fuertemente gelificada con hifas de 1-3 mm de grosor.

Material estudiado: VALENCIA: Els Surars (Pinet). Bajo Quercus suber, Cistus crispus y

Cistus salvifolius en suelo arenoso ácido. 20.X.1995. Leg. R. Mahiques. MES 2545

(Typus).

Observaciones: Se separa con claridad de Cortinarius croceocaeruleus var. croceocaeruleus

por su mayor porte (Píleo. 35-50 mm de diám., estipe: 35-40 x 10-12 (15) mm), su hábitat

en comunidades vegetales tipicamente mediterráneas y meridionales sobre suelo ácido y

sus esporas mayores (7,5-10 x 4,5-5,2 um).

Estudio estadístico

Los parámetros más representativos de las poblaciones han sido la longitud

esporal (L), anchura esporal (A), relación longitud/anchura (L/A) y el volumen (V)

calculado como el volumen de una elipse. Las posibles variaciones entre las variables

poblacionales se han estudiado mediante ensayos de diferencias entre medidas por la "t"

de student (Steel & Torrie, 1982). Los resultados obtenidos se presentan en la siguiente

tabla:

Source : MNHN, Paris

230 A. ORTEGA er al.

MES 2545 2 MES 2847

LI Al UAL — VI L2 A2 L/A — V2X

[Xm- Tw cu 18) OXON Te 752,3

= 035 0,18 0094 1347 | 0,41 0,25 0,099 99,9

n= 30 30 30 30 30 30 30 30

Comparación a % de diferencia

LUL 2114 14,5

ANA 223% 3,0

(L/ADIL/A2) 72** 11,2

V1/V22 , L9** 892

* y ** probabilidad estadística del 0,005 y 0.01 respectivamente

Se demuestra estadísticamente que todos los parámetros, entre los que destaca el

volumen (V) con un 89,2%, de la población MES 2545 son mayores que los de MES 2847,

lo que justifica la creación de una nueva variedad: Cortinarius croceocaeruleus var.

meridionalis Bidaud, Ortega £ Mahiques.

En la figura 1 se representan las poblaciones MES 2545 y MES 2847 mediante

los valores esporales de la longitud (L) y el volumen (V) que constituyen los dos paráme-

tros más significativos y que expresan con más claridad las diferencias entre las dos

variedades.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BRANDRUD T. E., LINDSTROM H., MARKLUND H., MELOT J. £ MUSKOS S., 1992 —

Cortinarius. Flora Photographica Vol. II. Matfors. Cortinarius HB. 40 p., 60 pl.

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ORTEGA A., 1995 — Some interesting species of the genus Cortinarius Fr. in Andalusia (Spain).

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ORTEGA A. & MAHIQUES R., 19954 — Some interesting species of the genus Cortinarius Fr. in

Andalusia (Spain), part 2. Documents mycologiques XXV(98-100): 295-304.

ORTEGA A. & MAHIQUESR., 1995b — Contribución al estudio del género Cortinarius en España

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SANCHEZ F., ORTEGA A.. HONRUBIA M. & TORRES P., 1995 — Hongos ectomicorricicos del

Maestrazgo II. Cortinarius. Documents mycologiques XXV (98-100): 425-435

STEEL R. G. D. & TORRIE J. H., 1982 — Principles and procedures of statistics A Biometrical

approach, 2nd ed. Tokyo. Mac. Graw-Hill. 664 p.

Source : MNHN. Paris

CORTINARIUS EN ESPAÑA PENINSULAR 231

1650 x

4 MES2847 MES2545 J .

1450

1250

5 1050

850

650

450

6.5 7.0 7.5 8.0 8.5 9.0 9.5

Longitud

Fig. 1. — Representación del tamaño espoal de Cortinarius croceocaeruleus var. croceocaeruleus

(MES 2847) y Cortinarius croceocaeruleus var. meridionalis (MES 2545).

Fig. 1. — Representation des tailles sporales de Cortinarius croceocaeruleus var. croceocaeruleus

(MES 2847) et Cortinarius croceocaeruleus var. meridionalis (MES 2545).

Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1997, 18 (3) : 233-246 233

MYXOMYCETES DE ESPAÑA.

TAXONES CRÍTICOS Y RAROS PARA EXTREMADURA .

C. ILLANA', G. MORENO", A. CASTILLO! & J. R. GARCIA?

1 Dpto. Biologia Vegetal. Universidad de Alcalá. 28871. Alcalá de Henares, Madrid. España

2 Teodoro Vera 8. 06920 Azuaga. Badajoz. España.

RESUMEN — Se citan 11 especies de Myxomycetes de las provincias españolas de Badajoz y Cáceres

(Extremadura), de las cuales 10 y 2 son nuevos registros provinciales, respectivamente. Arcyodes

incarnata (Alb. & Schw.) O. .F. Cooke, Dianema depressum (Lister) Lister, Didymium listeri Massee y

Trichia munda (Lister) Meyl., son nuevas citas para España. Physarum megalosporum T. Macbr. es

nueva cita para Europa. Las especies críticas son descritas e ilustradas con fotografías al M.E.B.

RÉSUMÉ — 11 espèces de Myxomycetes des provinces espagnoles de Badajoz et de Cáceres

(Extremadura) sont cités, parmi lesquelles 10 et 2 sont nouvelles respectivement aux provinces citées.

Arcyodes incarnata (Alb. & Schw.) O. F. Cooke, Dianema depressum (Lister) Lister, Didymium listeri

Massee et Trichia munda (Lister) Meyl., sont nouvelles pour l'Espagne. Physarum megalosporum T.

Macbr. est nouvelle pour l'Europe. Les espèces critiques sont décrites et illustrées avec des photogra-

phies au M.E.B.

ABSTRACT — They are cited 11 species of Myxomycetes of the Spanish countries of Badajoz and

Cáceres (Extremadura). of the which 10 and 2 is new provincial registrations respectively. Arc yodes

incarnata (Alb. & Schw.) O. F. Cooke, Dianema depressum (Lister) Lister, Didymium listeri Massee

and Trichia munda (Lister) Meyl., they are new appointments for Spain. Physarum megalosporum T.

Macbr. is a new record for Europe. The critical species are described and illustrated by S.E.M.

photography.

KEY WORDS: Myxomycetes, taxonomy, chorology.

INTRODUCCIÓN

En los últimos años hemos publicado distintos trabajos taxonómicos sobre los

Myxomycetes que fructifican en la comunidad autónoma de Extremadura (provincias de

Badajoz y Cáceres), caracterizada por la presencia de vegetación mediterránea bien

conservada con Quercus ilex, Q. suber, Alnus glutinosa, Erica arborea, Arbutus unedo,

Cistus ladanifer y Pinus pinaster, principalmente.

En este trabajo realizamos una nueva contribución taxonómica y corológica,

cómo resultado de los últimos trabajos de campo realizados, con una mayor incidencia en

Source :MNHN. Paris

234 C. ILLANA er al.

la provincia de Badajoz. A este respecto señalamos las publicaciones anteriores de

Moreno & al. (1990, 1991 y 1992), García (1991 y 1992) y García & al. (1994).

Tras esta nueva aportación el catálogo de Myxomycetes de Extremadura

asciende a 104 taxones (54 en Badajoz y 88 en Cáceres).

Los estudios morfológicos fueron realizados con un microscopio óptico Nikon

Labophot (M.O.) y un microscopio electrónico de barrido Zeiss-DSM 950 (M.E.B.). En

este último caso las muestras se prepararon con la técnica del punto crítico.

El material estudiado se encuentra depositado en el herbario del departamento

de Biología Vegetal de la Universidad de Alcalá (AH).

LISTA DE ESPECIES POR ORDEN ALFABÉTICO

Arcyodes incarnata (Alb. & Schwein.) O. F. Cooke, Science 15: 651. 1902 (Figs. 1-7)

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En madera de Populus alba, finca “El Rio”,

Granja de Torrehermosa, 27.X11.1993, AH 16503.

Esporocarpos de 0,3-0,5 mm de diám., globosos, algo piriformes, sésiles, for-

mando grupos muy apretados y amontonados, de color ocráceo. Peridio fino iridiscente

que deja ver el color pardo de las esporas en masa en su interior. Dehiscencia irregular,

dejando restos del peridio en la base de la esporoteca. Capilicio de anchura irregular,

5-8 um de diám., pardo, rígido, formado por filamentos que constituyen una red, con

abundantes engrosamientos, terminaciones redondeadas y ornamentado con espinas.

Esporas 7-8 um de diám., globosas, de color pardo-claro a amarillo, lisas o con una ligera

ornamentación verrugosa. Con el M.E.B. la cara interna del peridio presenta cortas

crestas que tienden a formar pseudoretículos; el capilicio tiene una ornamentación for-

mada por cortas crestas; y las esporas están ornamentadas con dos tipos de verrugas, unas

muy pequeñas, distribuidas homogéneamente por toda la superficie esporal, y otras más

grandes y muy escasas, distribuidas al azar o formando grupos.

Nuestra cita constituye el primer registro para España. Sin embargo, si aparece

citado otra especie del género, como es Arcyodes luteola (Kowalski) Nann.-Bremek.

(Eliasson & Lundgvist, 1979), caracterizada por su hábitat fimicola, capilicio liso y

esporas de mayor tamaño. Esta última especie es tratada como Perichaena luteola

(Kowalski) Gilert, por Gilert (1995).

Dianema depressum (Lister) Lister, Monogr. Mycetozoa 204. 1894. (Figs. 8-14).

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En madera de Nerium oleander, arroyo del

Cañaveral, Azuaga, 23.1.1993, AH 16422.

Plasmodiocarpos de 1,5-4 mm de diám., y 1 mm de altura, aplanados, de color

pardo grisáceo. Peridio fino, arrugado, iridiscente, que deja ver por transparencia el color

pardo grisáceo de las esporas en masa. Hipotalo que rodea a todo el plasmodiocarpo, de

color más claro. Capilicio 2-3 um de diäm., de color amarillo claro, formado por filamen-

tos libres, largos, terminados en punta y ornamentado con pequeñas verrugas. Esporas

8-9,5 um de diám., libres o en grupos de 2-3 unidades que se deshacen fácilmente, de color

amarillo, reticuladas. Con M.E.B. la cara interna del peridio presenta típicas cavidades

circulares; la ornamentación de los filamentos del capilicio es muy característica presen-

Source : MNHN, Paris

MYXOMYCETES DE ESPAÑA 235

tando un canal central de anchura uniforme con numerosos orificios a todo lo largo,

superficialmente los filamentos presentan pequeños anillos y crestas; y las esporas poseen

retículos de 8-12 mallas en diámetro.

En España solo aparecen citadas Dianema corticatum Lister y D. harveyi Rex,

por lo que D. depressum constituye el primer registro español. Nuestros estudios con

M.E.B. confirman los resultados obtenidos por Rammeloo (1983).

Didymium listeri Massee, Monogr. Myxogastr. 244. 1892. (Figs. 15-29).

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En hojas de Nerium oleander, arroyo Argallón,

Azuaga, 10.V1.1993, 6517. INGLATERRA: Tipo de Didymium listeri, Lyme Regis (K).

ISLAS GALÁPAGOS: Isla Santa Cruz, Los Gemelos, coll. U. Eliasson 3334 y 3398

(GB).

Nuestra recolección consta de dos plasmodiocarpos, de 1 y 3 mm de diám.,

aplanados y sésiles. Peridio de color grisáceo, rugoso, formado por una capa de cristales de

carbonato cálcico. Columela ausente. El capilicio está formado por filamentos rígidos,

paralelos, independientes o conectados entre sí por filamentos perpendiculares, de color

pardo oscuro. Esporas 9-10 um de diám., globosas, de color pardo violáceo oscuro,

verrugosas.

Didymium listeri posee un capilicio rígido y oscuro con barras transversales. Este

carácter diferencia a esta especie de otras del género Didymium que también fructifican

formando plasmodiocarpos cortos y planos: con peridio liso como D. comatum (Lister)

Nann.-Bremek., D. difforme (Pers.) Gray, D. tubulatum Jahn y D. trachysporum G. Lister;

con capilicio elástico como D. anellus Morgan; con vesiculas junto al capilicio como D.

serpula Fr.; o con esporas reticuladas como D. dubium Rostaf.

Didymium listeri es una especie muy poco citada a nivel mundial, de hábitat

foliícola, siendo nuestro registro el primero para España. Para confirmar la identidad de

nuestra recolección comparamos con material procedente de las Islas Galápagos, citado

por Eliasson & Nannenga-Bremekamp (1983), y además con el material tipo de D. listeri

depositado en K.

Didymium megalosporum Berk. & M. A. Curtis, Grevillea 2: 53. 1873.

= D. eximium Peck, Annual Rep. New York State Mus. 31: 41. 1879.

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En hojas de Nerium oleander, Rubus sp., Popu-

lus alba y Quercus ilex, arroyo Argallön, Azuaga, 3.X.1987, AH 16731. Idem, 5.X.1990,

AH 16724, 16732, 16733, 16739 y 16743. Idem, 19.1.1992, AH 16149. Idem, 10.V1.1992,

AH 16331. Idem, 20.V1.1992, AH 16260. Idem, 30.VIII.1992, AH 16344. Idem,

19.X1.1993, AH 16448. En hojas de Quercus ilex, finca “la Jacoba”, Azuaga, 6.111.1992,

AH 16148, 16246 y 16339. En hojas de Populus alba, finca “El Río”, Granja de Torreher-

mosa, 7.V11.1992, AH 16335. En hojas de Populus sp., arroyo Quejigo, Granja de Torre-

hermosa, 12.X1.1993, AH 18440. En hojas de Quercus ilex, arroyo Cañaveral, Azuaga,

10.1.1993, AH 16528. En tallo de Juncus sp., Campillo de Llerena, 24.1V.1994, AH 18808.

En tallos herbáceos, finca “El Milano”, Villar del Rey, 12.X1.1994, AH 16400. U.S.A.:

Tipo de Didymium megalosporum, South Carolina, coll. Curtis 1205 (FH). Coll. G. A. Rex

14,15 (NY). INGLATERRA: Tipo de Didymium megalosporum, South Carolina, coll.

Curtis 1205 (K). Coll. D.W. Mitchell 3642 (BR).

Source : MNHN, Paris

36 C. ILLANA et al.

Hemos estudiado el material tipo de Didymium megalosporum (FH, K) y com-

parado con material europeo de D. eximium. Los caracteres microscópicos y macroscópi-

cos son coincidentes en ambos taxones, especialmente la posesión de una columela plana

de color amarillento, por lo que somos de la opinión de que ambos taxones son sinónimos.

Anteriormente Ing al examinar el tipo de D. megalosporum depositado en Kew,

llega a la misma conclusión al manifestar “that it is undoubtedly the same as D. eximium"

(Martin & Alexopoulos, 1969).

Esta especie foliícola ha sido citada en nuestro país como Didymium eximium.

Hemitrichia clavata (Pers.) Rostaf. var. calyculata (Speg.) Yamam., Cryptogamic Flora of

Pakistan 2: 28. 1993.

= Hemitrichia calyculata (Speg.) M. L. Farr, Mycologia 66: 887. 1974

= Hemiarcyria calyculata Speg., Anales Soc. Ci. Argent. 10: 152. 1880

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En madera de Nerium oleander, arroyo Argal-

lón, Azuaga, 19.X1.1993, AH 16402. ARGENTINA: Hemiarcyria calyculata, Buenos

Aires, 111-1890, 31359 (LPS).

Hemitrichia clavata y H. calyculata han sido consideradas por todos los autores

como especies muy cercanas (Martin $: Alexopoulos, 1969; Farr, 1976; Flatau, 1990;

Nannenga-Bremekamp, 1991). La principal diferencia entre ambos taxones se encuentra

en el pie, que en el caso de H. clavata es corto y grueso, y se funde progresivamente con el

peridio y en H. calyculata es más esbelto y cilíndrico. Rammeloo (1975) observó solamente

pequeñas diferencias en la ornamentación de la cara interna del peridio.

En el tratamiento taxonómico de este taxon, y ante la falta de pruebas

concluyentes para separarlos a nivel específico, seguimos el tratamiento de Yamamoto &

al. (1993), que optan por tratar a esta especie como una var. calyculata de H. clavata, dado

que no hay diferencias significativas, hasta el momento entre los dos taxones.

Para conocer exactamente la identidad de Hemitrichia calyculata hemos inten-

tado estudiar el tipo, pero según el curator del herbario LPS está perdido. Sin embargo,

hemos podido estudiar la muestra determinada por Spegazzini 31359 (LPS), pero se

encuentra en muy mal estado, sin fructificaciones completas, a pesar que Farr indicó que

es mejor que la 31358 (LPS) considerada como tipo.

Physarum megalosporum T. Macbr., N. Amer. Slime-Moulds ed. 2. 63. 1922. (Figs. 30-35)

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En cladodios muertos de Opuntia ficus-indica,

finca “La Jacoba”, Azuaga, 23.X.1993, AH 16310. U.S.A.: Colorado, Pike View (locali-

dad tipo), 1914, coll. E. Bethel n° 9080, 802751 (BPI). Colorado, Pike View, 22-VIII-1912,

coll. W.C. Sturgis, 802750 (BPI). Colorado, Pike View, 17-IX-1913, leg. E. Bethel (deter-

minado por T. H. Macbr.), 802740 (BPI). Colorado, 1914, leg. E. Bethel (determinado por

T. H. Macbr.), 802739 (BPI). Colorado, 1918, leg. E. Bethel (determinado por T. H.

Macbr.), 802738 (BPI).

Esporocarpos de 0,5-1 mm de diám., gregarios, sentados o con un corto pie.

Esporoteca globosa o algo aplanada de color gris o blanco por los depósitos de carbonato

cálcico. Pie de color grisáceo o blanquecino por depósitos calcáreos. Capilicio robusto,

formando una red muy densa, pareciendo badhamioide, con abundantes nódulos de

Source : MNHN, Paris

MYXOMYCETES DE ESPAÑA 237

carbonato grandes y blancos. No se observa columela. Esporas 14-15(-16) um de diám.,

globosas, negras en masa, de color violeta oscuro con luz transmitida, con una zona mé

pálida, ornamentación espinulosa muy patente. La ornamentación esporal vista con el

M.E.B. aparece formada por espinas distribuidas homogéneamente por toda la superfi-

cie.

Nuestra recolección ha sido comparada con material americano de la localidad

tipo (algunas muestras determinadas por T. Macbride). Las únicas diferencias apreciadas

son, la ausencia en nuestra colección de esporotecas anulares y el pie algo más claro que en

el material americano. En las distintas descripciones existentes en las monografías de

autores americanos, se insiste en la posibilidad que los esporocarpos puedan ser sésiles, lo

que unido a su capilicio con nódulos de carbonato cálcico alargados, hace que Physarum

megalosporum pueda ser confundido con Badhamia macrocarpa (Ces.) Rostaf.

Al consultar la obra de Neubert & al. (1995) confirmamos que se trata del primer

registro de esta rara especie para Europa.

Physarum oblatum T. Macbr., Bull. Lab. Nat. Hist. Iowa State Univ. 2: 384. 1893.

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En madera de Nerium oleander, arroyo Argal-

lon, Azuaga, 11.1X.1991, AH 14252 y 16438. En madera de Populus alba, arroyo Argallón,

Azuaga, 20.V1.1992, AH 16439 y 16441.

Esporocarpos de 0,5-0,9 mm. de diám., estipitados no umbilicados, esf

Peridio de color amarillo a amarillo-anaranjado, con gruesas verrugas. Pie 0,3-0,8 mm de

altura, de color pardo rojizo, más oscuro hacia la base y adelgazándose hacia el ápice.

Hipotalo pequeño y oscuro. Columela ausente. Capilicio robusto, naranja a la lupa,

amarillo con luz transmitida, con nódulos angulosos y grandes. Esporas 11-12(-13) um de

diám., globosas algunas ligeramente ovoidales, de color violeta-gris pálido con zonas más

oscuras, verrugosas.

Physarum oblatum se ha citado previamente en nuestro país de las provincias de

celona (Llistosella & Aguasca, 1986) y Guadalajara (Pando & Lado, 1987).

Una especie muy próxima es Physarum limonium Nann.-Bremek., taxon dificil

de diferenciar de P oblatum. Ante la falta de carácteres fiables para separar ambos

taxones, preferimos utilizar en estos momentos el epíteto más antiguo para nuestras

recolecciones. Neubert & al. (1995) también comparten nuestra opinión y prefieren

utilizar P oblatum ante la dificultad de separarlo de P. limonium, según se desprende de la

lectura de la descripción de Nannenga-Bremekamp.

Stemonitis smithii T. Macbr., Bull. Lab. Nat. Hist. Iowa State Univ.

37)

: 381. 1893. (Figs. 36-

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En madera de Populus alba, arroyo Argallón,

Azuaga, 10.V1.1993, AH 16309.

característico de esta especie es su pequeño tamaño esporal (5-6 um)

igual al de Stemonitis a a (Bull.) T. Macbr., pero S. smithii se reconoce fácilmente por

su ornamentación esporal que vista con el M.E.B. consiste en pequeños báculos irregu-

larmente espaciados, y una superficie finamente escrobiculada entre ellos, además de

poseer el capilicio fuertemente verrugoso.

Source : MNHN. Paris

C. ILLANA er al.

Stemonitis splendens Rostaf., Sluzowce Monogr. 195. 1874. (Figs. 38-39)

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En madera de Nerium oleander, arroyo Argal-

lón, Azuaga, 7.VI.1991, AH 13765 y 13767. Idem, 28.1X.1991, AH 16371. Idem,

10.V1.1993, AH 16280. En madera de Nerium oleander, arroyo Cañaveral, Azua

19.V.1993, AH 16291. CÁCERES: En madera de Pinus pinaster, Embalse de Torrejón,

Parque Natural de Monfragüe, 1.X1.1990, AH 12898, 12901, 12918 y 12919.

La espora de Stemonitis splendens vista con el M.E.B. presenta una ornamenta-

ción formada por báculos regularmente distribuidos por toda su superficie.

Trichia munda (Lister) Meylan, Bull. Soc. Vaud. Sci. Nat. 56: 327. 1925. (Figs. 40-45)

MATERIAL ESTUDIADO. CÁCERES: En madera de A/nus glutinosa, en cámara

hümeda, arroyo Barbaón, Parque Natural de Monfragüe, 26.1V.1990, AH 13286.

Macroscópicamente Trichia munda es muy cercana a T. botrytis (J. F. Gmelin)

Pers. Ambos taxones se diferencian en que 7) munda posee esporocarpos de pequeño

tamaño (nunca mayores de 0,5 mm) y esporas de (9-)10-11 um de diám., fuertemente

ornamentadas. La ornamentación esporal vista con el M.E.B. presenta "pila" muy

diferenciados en los que la cabeza es densamente mamilífera; siendo muy parecida a la

ornamentación esporal de Meratrichia floripara (Rammeloo) Rammeloo (Rammeloo,

1981). Nuestras fotografías coinciden con las de Neubert & al. (1993).

Es la primera vez que se cita Trichia munda para Espana penínsular, anterior-

mente fue registrada en las Islas Canarias (Champion & Beltran, 1980).

Willkommlangea reticulata (Alb. & Schwein.) Kuntze, Revis. Gen. Pl. 2: 875. 1891.

= Cienkowskia reticulata (Alb. & Schwein.) Rostaf., Sluzowce Monogr.: 91. 1874.

MATERIAL ESTUDIADO. BADAJOZ: En tallos de Nerium oleander, arroyo Argallón,

Azuaga, 20.X1.1991, AH 16391.

Es una especie poco citada en España, solo se conoce de La Coruña (Cabo, 1996)

slas Canarias (Champion & Beltran, 1980).

y de la

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen a la DGICYT (Ministerio de Educación y Ciencia) la

concesión del proyecto de investigación PB 91-0165, en el cuál se encuadra este trabajo. A

la asociación ADENEX, por la colaboración y apoyo prestado. A D. J. A. Pérez del

Servicio de Microscopía Electrónica de la Universidad de Alcalá de Henares por la

obtención de las fotografías de microscopía electrónica. A los conservadores de los

herbarios BPI, BR, FH, GB; K, LPS, NY por el préstamo del material solicitado, y

especialmente al conservador del herbario AH J. Rejos.

Source : MNHN. Paris

MYXOMYCETES DE ESPAÑA 239

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Source : MNHN, Paris

Arcyodes incarnata (Alb. & Schwein.) O. F. Cook, (AH 16503). 1: cara interna del peridio al

-3: capilicio al M.E.B. 4-7: esporas y ornamentación esporal al M.E.B.

16422). 8: cara interna del peridio. 9-10: capilicio

al M.E.B.

Figs. 15-24 Didymium listeri Massee, (15-20: Tipo, depositado en K). 15-16: plasmodiocarpos. 17-20:

capilicio y esporas al M.O. (21-24: AH 16517). 21: plasmodiocarpo. 22-24: capilicio y esporas al M.O.

Source : MNHN. Paris

MYXOMYCETES DE ESPAÑA 243

Figs. 25-29 Didymium listeri Massee, (Tipo, depositado en K). 25-26: capilicio al M.E.B. 27-29:

ornamentación esporal al M.E.B:

Source : MNHN. Paris

Figs. 30-35 Physarum megalosporum T. Macbr., 30-32 (AH 16310): ornamentación esporal al M.E.B.

33-35 (BPI 802740): esporas y ornamentación esporal al M.E.B.

Source : MNHN, Paris

MYXOMYCETES DE ESPANA 245

Figs. 36 -37 Stemonitis smithii T. Macbr., (AH 16309): ornamentación esporal al M.E.B.

Figs. 38-39 Stemonitis splendens Rostaf.. (AH 16291): ornamentación esporal al M.E.B.

Source : MNHN. Paris

Figs. 40-45 Trichia munda (Lister) Meyl., (AH 13286). 40-41: capilicio al M.E.B. 42-45: esporas y

ornamentación esporal al M.E.B.

Source : MNHN. Paris

Cryptogamie, Mycol. 1997, 18 (3 ) : 247-254 247

PODAXIS SAHARIANUS sp. nov. (Podaxales, Gasteromycetes),

ESPECE NOUVELLE DU MAROC

G. MORENO! £ J. MORNAND?

! Dpto. Biologia Vegetal. Facultad de Ciencias. Universidad de Alcalá de Henares,

28871 Madrid, Spain.

? 29, square des Anciennes Provinces, 49000 Angers, France.

RÉSUMÉ — Une espèce nouvelle, Podaxis saharianus, de position intermédiaire entre Gasteromy-

cetideae et Agaricomycetideae, est décrite du Maroc, illustrée en SEM et en microscopie optique et

comparée aux espèces apparentées.

MOTS-CLÉS : Podaxis saharianus, Podaxales, Maroc.

ABSTRACT- A new species Podaxis saharianus in an intermediate position between Gasteromyceti-

deae and Agaricomycetideae is described from Morocco, illustrated by SEM and LM photographs,

and compared to related species

KEY WORDS : Podaxis saharianus, Podaxales, Taxonomy, Morocco.

MATERIEL ET METHODES

Nous avons pu étudier un exemplaire bien mûr d’un champignon venant du

Sahara, accompagné d'une excellente photographie en couleurs. Celui-ci possède une

macroscopie particulière et une microscopie caractéristique au sein du genre Podaxi:

Les Podaxales, adaptés aux lieux secs ou semi-désertiques, ont pour caractère

habituel de produire difficilement des sporophores abondants et aussi d’apparaitre dans

les mêmes stations à quelques années d'intervalle ; c'est ce que nous avons constaté avec

des espèces des genres Battarraea, Dictyocephalos, Phellorinia et Podaxis. La rareté de tous

ces taxons nous amène à communiquer notre nouvelle espèce à la communauté mycolo-

gique internationale.

L'étude des spores au microscope électronique à balayage (MEB) fut réalisée

avec un Zeiss-DSM 950. La microscopie optique (LM) fut réalisée avec un microscope

Nikon Labophot équipé d'un système de photographie automatique. Les préparations

pour ces études furent faites dans le milieu de Hoyer.

Le matériel de Podaxis saharianus, décrit ici est conservé dans l'herbier de

l'Université de Alcalá (AH), et dans l'herbier privé de J. Mornand (J. M.).

Source : MNHN. Paris

248 G. MORENO & J. MORNAND

DIAGNOSE LATINE

Podaxis saharianus G. Moreno & Mornand sp. no»., (Figs. 1-16)

Etymology : saharianus, du Sahara, endroit d’origine de la nouvelle espèce.

Diagnose latine : Gastrocarpus globosus, 18 mm diam., pallide stramineus. Colu-

mella adsunt fere apicem. Gleba nigrescente aut olivascens inmixta, pulverulenta vel granu-

losa, cum lamellis aut granulis albidis efformatibus. Stipes 90 x 7 mm, cylindricus, concolo-

ribus, annulis pendulis numerosis exornatis.

Sporis 10-12 x 8-9 um, ovoideis vel ellipsoideis, poro germinativo apicale centrali

exornatis, crassitunicatis, ochraceis. Basidiis aggregatis, 22-28 X 13-17 um, claviformibus,

tetrasporis, sterigmatis curtis (ca 2 um long), basidiolis abundantibus aut basidiis immaturis,

claviformibus, 15-26 X 9-14 um. Hyphis 3-5 um diam., hyalinis, cylindricis, septatis. Capilli-

tium non observatus. Epicutis hyphis cylindricis, subglobosis, raro globosis, 32-52 x 15-30 um

exornatis. Fibulis praesenti

Holotypus : Sahara (Maroc), 18.111.1994. in herb. AH n° 18.352.

Matériel étudié : Afrique ; Sahara, Merzouga (Maroc), dunes de Merzouga,

(limite du Sahara) ; à quelques dizaines de mètres de graminées et avec Cyperus sp. aux

alentours ; leg. H. Robert, 18. III. 1994. Echantillon in Herb. AH, n? 18.352 (Holotypus) ;

Isotypus in Herb. J. Mornand n? 9405 G.

DESCRIPTION

Basidiome stipité. Chapeau globuleux de 18 mm de diam., faiblement aplati vers

le sommet, d'une couleur paille claire. Columelle présente presque jusqu'au sommet.

Péridium de 1-2 mm d'épaisseur. Marge pendante et lacérée. Gléba sombre noirátre avec

zones olivátres, poudreuse à granuleuse, formée de plaques ou de granules avec des lignes

blanchátres. Stipe de 90 x 7 mm, cylindrique, d'une couleur paille claire, concolore au

chapeau ; le cortex se brise en formant plusieurs anneaux pendants ouverts en forme de

« jupe » ; la base cylindrique agglomère le sable et il semble possible qu'elle soit un peu

radicante.

Spores de 10-12 x 8-9 um, ovoides à ellipsoidales avec pore germinatif au

sommet et au centre, à paroi épaisse, ochracées, ni amyloides, ni dextrinoides. Basides

groupées, de 22-28 x 13-17 um, claviformes, tétrasporiques, avec stérigmates courts

(approx. 2 um de long), avec d'abondantes basidioles ou basides immatures de 15-26 x

9-14 um, claviformes. Hyphes de 3-5 um de diam., hyalines, cylindriques et septées.

Capillitium non observé. Epicutis formé d'hyphes de morphologie variable, cylindriques,

subglobuleuses, plus rarement globuleuses de 32-52 x 15-30 um. Boucles présentes parmi

les cellules de l’hyménium.

OBSERVATIONS

Podaxis saharianus se caractérise par son basidiome avec un stipe ridé d'aspect

singulier, par des basides en groupes persistants, de grandes spores avec pore germinatif et

un habitat xérophitique.

Source : MNHN. Paris

PODAXIS SAHARIANUS sp. nov. 249

Il reste encore des éléments descriptifs inconnus pour ce nouveau champignon,

comme celui de la déhiscence ; il est probable que ce phénomène intervienne par la

séparation du péridium complet, au niveau de son insertion avec le sommet du stipe,

comme c'est le cas dans le genre Battarrea, mais il pourrait également s'agir d'une

déchirure irrégulière de l'exopéridium. Les données que nous possèdons à propos de ses

exigences écologiques sont également rares et l’on a besoin de nouvelles récoltes pour

répondre à ces questions.

On le différenciera des Gyrophragmium Montagne et Longula Zeller (= Longia)

car ces deux genres ont une macroscopie différente, des spores sans pore germinatif et des

basides groupées non persistantes à maturité. Il en est de méme pour l'étrange champi-

gnon Polyplocium inquinans Berk., transféré dans le genre Gyrophagmium par Zeller

(1943), qui apparait sur des termitières en Afrique, avec une volve très caractéristique ; ce

dernier est décrit et photographié in Bottomley (1948).

Par rapport à Montagnea Fr., l'hyménophore est presque lamellé, les spores

possèdent un pore germinatif très large et la macroscopie est très différente.

La position systématique des Podaxis est assez difficile à préciser. Ils appartien-

nent à un petit groupe de champignons très importants et intéressants sur le plan

systématique, intermédiaires entre Agaricales ss. lato et Gastéromycétes (Singer, 1986). Ce

groupe est trés controversé de nos jours, car certains auteurs l'incluent en grande partie

dans les Agaricales ss. lato alors que d'autres les rassemblent au sein des «Gastéromycétes

agaricoides». Par la présence de spores sombres munies d'un pore germinatif, on peut

rapprocher les Podaxis du genre Montagnea, mais la gléba granuleuse et la persistence de

basides groupées à maturité le séparent clairement de ce genre.

L'ordre des Podaxales renferme deux familles, Podaxaceae Fr. et Secotiaceae

Tul., d'aprés Dominguez de Toledo (1993), qui se différencient par la présence d'une gléba

pulvérulente à maturité et d'un pied assez développé chez la premiére et par la gléba ferme,

compacte à maturité et d'un pied peu développé chez la seconde.

La présence, dans la récolté saharienne d'un pied assez développé, d'une

columelle, de spores munies d'un pore germinatif, ainsi que la persistance dans la gléba

de quelques groupes de basides à maturité, la rapproche clairement du genre Podaxis

Desv.

Ce genre Podaxis a été l'objet de révisions importantes : Morse (1933) réduit les

32 espéces décrites jusque là à une seule. Ensuite, McKnight (1985) reconnait 4 espéces,

distribuées en 2 sections : Section Parvispora [3 espèces : P. longii McKnight, caractérisée

par la gléba marron noirátre et les spores de (5,5) 6,1-8,8 x 5-7,2 (7,7) um avec un pore

germinatif à peine visible ; P argentinus Speg., à spores de 5,3-7,7 (8,8) X 4,4-6,6 (7,7) um,

sans pore germinatif et P microporus McKnight, à gléba de couleur marron et spores de

6,6-8,8 X 5,5-7,7 um avec pore germinatif trés étroit], et Section Podaxis [une espèce : P

pistillaris (L. : Pers.) Fr., (Fig. 17), caractérisé par ses spores de dimensions variables,

4,8-18 (19) x 3,2-12 (13) um, (Dominguez de Toledo, 1993) et la présence d'un pore

germinatif apical, tronqué et trés large (Figs. 18-20)].

On a décrit diverses espéces africaines de Podaxis, généralement synonymisées

avec P. pistillaris (Bottomley, 1948). Néanmoins, une révision des rypus serait nécessaire

pour confirmer ces synonymies et comparer les taxons en cause avec la nouvelle espéce

proposée.

D'après les mesures sporales, Podaxis saharianus peut être placé dans la section

Podaxis. 1 se différencie par les spores munies d'un petit pore germinatif apical, par les

boucles présentes parmi les cellules de l'hyménium et, macroscopiquement, par la pré-

sence dans le stipe de plusieurs zones en forme de « jupes » caractéristiques.

Source : MNHN. Paris

250 G. MORENO & J. MORNAND

En conclusion nous pensons pouvoir placer notre espèce dans l'ordre des

Podaxales s. Dominguez de Toledo (1993) et Demoulin ( 1995).

REMERCIEMENTS

AH. Robert pour sa perspicacité face à cette espèce et pour son mérite d’avoir

pris de bonnes photos, nous permettant ainsi d'effectuer une étude satisfaisante de cette

récolte exceptionelle. À F. D. Calonge, V. Demoulin, E. Horak et H. Kreisel pour leurs

commentaires et la relecture du manuscrit et à J. E. Wright pour ses commentaires et sa

diagnose latine. Ce travail a été partiellement financé par le Projet de Recherche DGICYT

PB 91-0165.

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Figs. 1-8.- Podaxis saharianus (Holotypus), 1-3 : Hyphes de l'exopéridium (LM), 4 : Hyphes de la

gléba (LM), 5-7 : Basides et basidioles (LM), 8 : Boucle (LM).

Source : MNHN. Paris

Figs. 9-15. — Podaxis saharianus (Holotypus), 9-11 : Spores (LM), 12-15 Spores où l'on observe

clairement le pore germinatif (MEB)

Source : MNHN. Paris

PODAXIS SAHARIANUS sp. nov. 253

Figs. 16.- Podaxis saharianus (Holotypus), Basidiome.

Source : MNHN. Paris

254 G. MORENO & J. MORNAND

Figs. 17-20.- Podaxis pistillaris (BCMEX 4728), 17

Basidiome, 18-20 : Spores où l'on observe

clairement le pore germinatif (MEB)

Cryptogamie Mycol. 1997, 18 (3): 255-265 255

CARACTERIZATION OF CULTIVATED STRAINS

OF A NEW EDIBLE MUSHROOM:

STROPHARIA RUGOSO-ANNULATA. 1. PROTEIN VARIABILITY.

Michele BONENFANT-MAGNE !, Christian MAGNE

Marie-Andrée ESNAULT ' and Cécile LEMOINE !

! Laboratoire de Botanique Appliquée, Université de Rennes I,

Campus de Beaulieu, 35042 RENNES CEDEX, FRANCE.

? Laboratoire de Biologie et Physiologie Végétales,

Université de Reims, Moulin de la Housse, BP 1039,

51687 REIMS CEDEX 2, FRANCE.

* Corresponding author: Tel.: +33 03 26 05 34 41; Fax: +33 03 26 05 34 27

email: christian.magné@univ-reims.fr

ABSTRACT — Fourteen cultivated strains of the edible mushroom Stropharia rugoso-annulata have

been collected from different research groups in Europe and compared to evaluate intraspecific

variability. Electrophoretic analysis of soluble mycelium proteins was found to be an efficient tool to

describe the variability. The relative similarities between total protein patterns and esterase isozymes,

as calculated from the Rogger's and Jaccard’s coefficients, and the resultant dendrograms allowed us

to characterize two main clusters of strains: the first one consisted of seven strains from Belgium,

Germany, France and Hungary and the second included four strains from Germany and Hungary.

The three remaining strains isolated following total protein analysis could be considered, with respect

to esterase pattern, as close to one or the other group. The esterase enzyme study appeared as a more

powerful tool to assess the intraspecific variability. This is of special interest for further work aimed

at improving the commercial quality of Stropharia.

KEY WORDS: basidiomycetes, biodiversity, edible mushroom, esterases, protein electrophoresis,

Stropharia rugoso-annulata

RéSUMÉ — La diversité au sein de l'espèce cultivée Stropharia rugoso-annulata a été évaluée à partir

de 14 souches d'intérêt commercial provenant de différents laboratoires de recherche européens. Les

profils électrophorétiques des protéines solubles (protéines totales et système estérasique) sur gel de

polyacrylamide ont permis de décrire la variabilité protéique de l'espèce. Sur la base des protéines

totales, les degrés de similarité entre souches, calculés selon les coefficients de Roggers et Jaccard, ont

conduit à l'obtention de deux groupes principaux. Le premier groupe est formé de 7 souches

d'origines belge, allemande, française et hongroise et le second, de 4 souches provenant d'Allemagne

et de Hongrie. Le profil enzymatique des trois souches non classées permet de supposer qu'elles sont

proches tantôt du premier groupe, tantôt du second. Le potentiel de ces souches devra maintenant

être évalué en culture; il pourra ensuite être exploité lors de travaux d'amélioration commerciale de

l'espèce.

MOTS CLES: basidiomycètes, biodiversité, champignon cultivé, électrophorése des protéines, esté-

rases, Stropharia rugoso-annulata.

Source : MNHN, Paris

256 M. BONENFANT-MAGNE e? al.

INTRODUCTION

Stropharia rugoso-annulata Farlow ex Murrill is a homobasidiomycete, in the

order Agaricales and the family Strophariaceae. The domestication of Stropharia rugoso-

annulata for mushroom production was first proposed by Puschel (1969) at Dieskau

(Germany). Original strains were collected from the natural environment of the saprophy-

tic basidiomycete. Subsequently, a number of works focused on cultural techniques in the

70's, mostly in Czechoslovakia (Staneck,1974), Hungary (Balazs, 1974) and Poland

(Szudyga, 1978).

In Europe, the white button mushroom dominates commercial production.

However, worldwide interest in mushroom cultivation is increasing and the diversification

of European production has become necessary. Among higher fungi, Pleurotus sp. (Oys-

ter) and Lentinus edodes (Shiitake) are known as economically important genera and are

thoroughly studied in many laboratories. The edible mushroom, Stropharia rugoso-

annulata, could also contribute to the diversification of cultivated mushrooms through the

development of specific cultivation techniques (Poppe & Sedeyn, 1987; Bonenfant, 1993).

Until now, there has been no information on the biological diversity within collections of

Stropharia strains. The purpose of our investigations was to evaluate the natural variabi-

lity in this cultived species with regard to advances in selection, improvement of strains,

and, the necessity for efficient protection of commercial varieties. When only the vegeta-

tive stage is available, a statistical study of electrophoretic profiles of soluble proteins or

isozyme activities is generally seen as a valuable tool in taxonomy (Royse & May, 1987;

Itavaara, 1988: May & Royse, 1988; Itavaara, 1990). In the present paper, fourteen

commonly used strains of Stropharia rugoso-annulata from various origins are characte-

rized by electrophoretic protein patterns. We first describe the total protein pattern of each

strain with the aim of assessing the degree of similarity between them. Then, the results

obtained through total protein analysis are compared to those of esterase zymograms, this

enzyme system being known to exhibit a large number of isozymes.

MATERIALS AND METHODS

Biological material. — Fourteen dikaryotic strains of Stropharia rugoso-annulata were

collected from different European research laboratories and from spawn growers. The

strains under study were chosen because of their use in cultivation and their commercial

interest. However, no indications about varietal or genetic diversity between these strains

are available. The strains and their origins are listed in Table I. The abbreviations are those

known in the laboratories from which the strains are supplied

Culture media and growth conditions. — Two types of media were used for vegetative

multiplication: a liquid medium (10 g/l malt extract, MI) and a solid one (20 g/l malt

extract added with 15 g/l agar, M2). The agar medium (M2) was autoclaved for 20 min at

120°C before being poured in sterile petri dishes (about 20 ml/dish). For the liquid medium

(M1), 25 ml aliquots were transferred to 65 ml flasks. Then the flasks were stoppered with

cotton plugs and autoclaved at 120°C for 20 min. A piece of mycelium (5 mm in diameter)

grown on the sterile solid medium (M2) was transferred aseptically to the flasks containing

liquid medium (M1), and the culture was placed for 21 days at 20°C in the dark.

Sample preparation. — The mycelia were harvested, filtered and washed with distilled

water. The samples were then freeze-dried and stored at -20°C for subsequent analysis.

Source : MNHN. Paris

PROTEIN VARIABILITY OF STROPHANIA NGOSO-ANNULATA 257

Abbreviations j Origin

IT Lab. voor Fytopathologie, University of Gent (Belgium)

606 ; 610 "Mycoblank", Merlebeke (Belgium)

L3G Versuchsanstalt für Pilzanbau, Krefeld (Germany)

Z10 Institut für bodenbiologie, Braunschweig (Germany)

WD ; GD ; GRD ; T54 VEG - Champignonzucht, Dieskau (Germany)

GH; WH ; LH Rescarch Center for Agrobotany, Kecskemet (Hungary)

F700 "Royal Champignon", Saumur (France)

LM C.R. Champignons, I.N.R.A., Bordeaux (France)

Table I. — Origin of the commercial strains of Stropharia rugoso-annulata collected for the study.

Twenty milligrams of freeze-dried mycelium were weighed out and ground with liquid

nitrogen. Mycelium powder was then homogenized at 2°C in 1.0 ml of extraction buffer.

After centrifugation at 17600 g, the pellet was discarded and the supernatant was analysed

as the total protein extract. With the aim of optimizing protein extraction, four different

extraction buffers were tested: two phosphate buffers (50 mM) with pH adjusted to either

6.0 or 7.5, and two Tris (Tris hydroxymethyl aminomethane) buffers (Tris-HCI, 50 mM,

pH 7.5 and Tris 25 mM-Glycine 192 mM, pH 8.3).

Protein determination. — Protein content was determined as described by Bradford

(Bradford, 1976) using Bovine Serum Albumine (BSA) as the standard.

Polyacrylamide gel electrophoresis, — Protein samples containing 50 mg of soluble

proteins were subjected to non-denaturing electrophoresis on a 1 mm thick, 7.5% polya-

crylamide gel overlaid with a 4.5% polyacrylamide stacking gel using the discontinuous

buffer system of Laemmli (Laemmli, 1970). Electrophoresis was carried out at 5°C with a

constant 15 mA current per slab.

Protein and esterase staining. — After electrophoresis, the gel slabs were placed directly

into solutions for the staining of specific proteins. Coomassie Brilliant Blue R 250 (Sigma)

was used for staining total proteins. To detect esterase activities, the gel slab was incubated

for 1 hour at 37°C in a staining mixture containing: 0.1M phosphate buffer, pH 6; Img/ml

Fast Blue RR salt; 1% a-naphthyl acetate and 1% b-naphthyl acetate. The naphthol radical

of the carboxylic esters was released by esterases and combined with diazonium salt (Fast

Blue RR) to form an insoluble product. The resulting bands on the gel slab were dark

brown or pink depending on whether they involved a — or b-naphthyl acetate, respecti-

vely.

Numerical analysis. — Relative electrophoretic mobilities (Rm) of the protein bands were

calculated and the absence or presence of each band was recorded. Jaccard and Rogger's

similarity coefficients for all possible pairs of isolates were calculated according to Bidault

Source : MNHN, Paris

258 M. BONENFANT-MAGNE et al.

Proteins extracted (mg/gDW)

Phosphate Tris-HCl Tris-Glycine

Extraction buffers

Fig. 1. Effect of buffer composition on the quantity of mycelium protein extracted. Data are means

+ standard deviation of three replicates.

(Bidault, 1971). The degree of similarity between strains, as based on Jaccard's coeffi-

cient, was used to generate a dendrogram with a STAT-ITCF computer program accor-

ding to the ‘weighted mean distance’ method.

RESULTS

Mycelial protein extraction. — When applied to the same strain, the four extracting buffers

tested showed different patterns of extractibility (Fig. 1). Tris buffers seemed to be more

efficient for mycelial protein extraction, as compared to phosphate buffers with similar pH

value. Considering the effect of buffer pH on protein extraction, it was found that alkaline

buffers are more powerful than neutral or weakly acidic ones. For these reasons, the

comparative study of both strains on the basis of protein content and pattern has been

performed with Tris-glycine extracts (pH 8.3). This extraction buffer was also used as the

running buffer for electrophoretic studies. It has to be noted that the addition of polyvinyl

polypyrrolydone (PVPP) to the extraction buffer did not improve the quality of electro-

phoretic pattern of mycelial proteins. In addition, the use of SDS (sodium dodecyl sulfate)

Source : MNHN, Paris

PROTEIN VARIABILITY OF STROPHANIA NGOSO-ANNULATA 259

150

Protein content (mg/g DW)

Strains

Fig. 2, Protein content (mg/g dry weight) of mycelium of Stropharia rugoso-annulata strains after

21 days of cultivation on M1 medium.

or ME (b-mercaptoethanol) increased considerably the number of bands on protein

pattern. This would allow to compare strains only on the basis of band intensity rather

than the commonly used presence/absence criteria. Therefore, soluble proteins of Stro-

pharia strains have been studied under non-denaturing conditions.

Protein content of the mycelium. — The dry weight of mycelia grown for 21 days in the

liquid M1 medium ranged from 40 to 60 mg per flask, depending on the strains. The

content of soluble proteins for each strain is represented in Figure 2. This trait revealed a

large heterogeneity between strains, with 606 exhibiting the lower protein content (7.7%

DW) and a group of strains (610, WD, GRD, F700, LM, WH) being rich in soluble

proteins (> 14% DW).

Total protein patterns. — Coomassie Brilliant Blue reagent, used for total protein staining,

allowed the discrimination of eleven different profiles from the fourteen strains under

study (Fig. 3). Three bands (not represented on Figure 3) were found in all patterns and the

analysis of 15 other protein bands allowed us to assess intraspecific variation. Some

similarities were observed among patterns, from which the succession of three minor

bands (Rm 0.46; 0.48; 0.50) and two other ones (Rm 0.87; 0.89) could help to characterize

four strains (LH, GH, L3G, GD). On the other hand, the Belgian strain 606 was clearly

distinguishable from the others, in that it exhibited only a few number of protein bands.

Source : MNHN. Paris

260 M. BONENFANT-MAGNE et al.

EN LM L3G GH

Rm Z10 F700 610 WH WD GRD 606 T54 LH GD

0.04

0.16 I—3Á

0.19 — PA Pl I rer PE pen |

0.26 r—JI

0o37 J. fe) ee | 27] LI

Ma Es nei) A E

0.46

0.54 HH [Al

0.77

0.87 |

0.89

Fig. 3. Diagram of electrophoretic patterns of total proteins from 14 Stropharia rugoso-annulata

strains : only the bands showing variations are represented.

The relative similarities between protein patterns of these strains were determined by the

calculation of Rogger and Jaccard’s coefficients (Fig. 4). The latter always gave higher

values than the former. However, similar trends were found in that two groups of strains

having high similarity indexes could be separated. The resultant dendrogram based on

cluster analysis of these phenotypic similarities is represented in Figure 5.

In terms of phenotypic characterization, two main clusters of strains were

identified by the analysis of banding pattern for heterozygous individuals. The first cluster

included seven strains: two Belgian strains (IT, 610), two German strains (Z10, WD), two

French strains (LM, F700), and one Hungarian strain (WH). The second major cluster

includes four strains; two German (GD, L3G) and two Hungarian (LH, GH). Two other

German strains (T54 and GRD) have been classified in an intermediary position between

these two main clusters, and a single strain from Belgium (606) appeared to be more

divergent according to this method.

Esterase patterns. — The electrophoretic variation of esterase isoenzymes between culti-

vated strains of Stropharia rugoso-annulata was studied. Depending on the strains, a

maximum of 15 bands with enzyme activity appeared on the gels (Fig. 6). Among these

bands, five corresponded to the b-esterase activity. The isozyme with the highest molecular

Source : MNHN, Paris

IT IM L3G

Z10 F700

WD WH 610 T5 GRD GH LH

Jaccard":

coefficient

Fig. 4. Comparison between Rogger and Jaccard’s coefficients calculated from total protein >

80 % : E: 75 to 80 % ; []: 70 to 75 %

cluster 1 cluster 2

IT LM ph

Z10 WH WD F700 610 TS4 GRD een

T Jr I i ar m 100

Fig. 5. Dendrogram of Jaccard's similarities for 14 Stropharia rugoso-annulata strains based on total

protein patterns.

Source : MNHN, Paris

262 M. BONENFANT-MAGNE er al.

610

"Es IT wH Z10 F700 600 LM WD T54 GH GD L3G GRD LH

0.02

[m -—

0.14

u H H H

0.20 yes

0.33

0.36 + =} p 12

0.38 * 4

wu LL m

0.46 * == El =

0.54 + m

Fig. 6. Diagram of electrophoretic patterns of esterase isozymes from 14 Stropharia rugoso-annulata

strains ; *, pink band indicating f-esterase isozyme.

weight was recorded in only one strain, 606. In contrast, the lightest isozyme (as well as

that with a Rm of 0.44) was present in every strain. It is also the most abundant form of

esterase, as shown by the intensity of the corresponding band. Unlike what was seen with

protein patterns, a large diversity of band width and intensity was found. Moreover,

strains belonging to the second cluster previously defined could be characterized by the

presence of one esterase isoform, which showed a Rm of 0.46. A relatively low variation

could be detected between the strains included in the first cluster as determined by total

protein patterns (Fig. 7). Interestingly, the enzyme pattern of Belgian strain 606 (and to a

lesser extent that of T54) was not very different from that of these strains. Thus, the 606

strain could be considered, on the basis of esterase pattern, as close to the first cluster of

strains.

In contrast to the strains from the first group, the remaining strains are more

distinguishable one from another, on the basis of the esterase zymograms.

DISCUSSION

Taxonomic identification of the species Stropharia rugoso-annulata was prima-

rily based on the morphological study of the reproductive structure (Puschel, 1969;

Guimberteau, 1978; Kuhner & Romagnesi, 1978; Lamoure, 1984). However, morpholo-

Source : MNHN, Paris

PROTEIN VARIABILITY OF STROPHANIA NGOSO-ANNULATA 263

cluster 1 cluster 2

ASS, aH

(Gtown IT z10 F700) 606 Gm wo) T54 (cu GD 136) GRD (5) Be

100

Fig. 7. Dendrogram of Jaccard's similarities for 14 Stropharia rugoso-annulata strains based on

esterase zymogram.

gical variation within this edible wood-rotting basidiomycete is not reliable enough to

identify commercial varieties (Puschnel, 1969; Zadrazil & Schliemann, 1975; Szudyga,

1978; Delmas, 1989). The present paper describes the first results concerning variability

within the commercial mushroom species Stropharia rugoso-annulata. In this work, the

total protein patterns of 14 cultivated strains, selected for their commercial interest, were

compared to evaluate intraspecific variability. In addition, esterase enzymes were studied

because of the great polymorphism exhibited by the strains for this enzyme system. In view

of the lack of information about Stropharia proteins, we first had to set out optimal

conditions for soluble protein extraction. In this way, it was shown that alkaline Tris

buffers were more efficient for mycelial proteins. This observation differs from what was

previously described for Pleurotus or Agaricus basidiocarps (Mouches et al., 1981;

Volland-Nail, 1981) and shiitake mycelium (Itavaara, 1990). However it is consistent with

other works (Royse & May, 1987; May & Royse, 1988).

The diversity among Stropharia strains was assessed and, on the basis of the

present work, two phenotypic clusters of strains having various origins were identified.

The first cluster included seven strains from Belgium, Germany, France and Hungary (IT,

610, Z10, WD, LM, F700, WH), among which the total protein and isozyme patterns

revealed only small intraspecific variations. According to total protein patterns, only four

strains from Germany and Hungary constituted the second cluster (LH, GH, GD, L3G).

However, separation of esterase isozymes showed more variation in this group than in the

first one, suggesting that the enzyme analysis is a more valuable tool (as compared to total

protein study) for the identification of these strains.

From our classification, 3 strains may be distinguished: the 606 strain because of

its low protein content. This particularity was confirmed with a low number of protein

Source : MNHN. Paris

264 M. BONENFANT-MAGNE er al.

bands. In addition, this strain presents some signs of degeneration (Bonenfant, 1993). The

two other strains, T54 and GRD, are characterized by an intermediary position between

the two clusters defined from total protein analysis. Even if esterase pattern study suggests

they could be related to the strains from the first cluster, we consider that T54 and GRD

strains should form specific phenotypes, which represent a large part of the variability in

the cultivated species. The cultural potential of these two strains remains to be assessed.

The results described in this paper allow us to present a new phenotype of Stropharia

rugoso-annulata to growers in France and in Belgium where these strains were not used

before. As it has been reported earlier (Toyomasu & Zennyozi, 1981; Boisselier-Dubayle,

1983; May & Royse, 1988; Wang & Wang, 1989), our findings confirm protein electropho-

resis as a powerful analytical method that provides useful informations for industrial

mushroom production: it may be used for evaluation of biological diversity in a species, for

breeding work, for the registration of new strains and for quality control. Also, it might

allow the detection of mutations in commercially important strains. However, the analysis

of total protein patterns appears to be inaccurate and dull, due to the very large number of

bands on electrophoretic profiles. For this reason, isozyme analysis seems to be more

promising for an accurate identification of mushroom strains, as it has been reported for

other species (Boisselier-Dubayle, 1983; Royse & May, 1987; Itavaara, 1988; May & Royse,

1988). In addition, our study of esterase patterns could be complemented with similar

analysis carried out on other enzyme systems. For this purpose, a similar analysis of

electrophoretic patterns was carried out with malic deshydrogenase (MDH) system.

However, MDH isozymes did not allow us to show genetic variations between most of

these Stropharia strains (Bonenfant, 1993). On the other hand, further work has been

carried out in our lab to characterize the fourteen previous strains on the basis of anatomy

description and physiology of mycelium development (Bonenfant-Magné et al., submit-

ted for publication). Together, both studies provide the first detailed informations on

variability within S. rugoso-annulataspecies.

Also, considerably powerful and informative methods such as RAPD or PCR

analysis are in use today and have been applied successfully to study intraspecific genetic

diversity of organisms (Tingey £ Del Tufo, 1993). There is no doubt that such new

techniques would allow the description of the genetic diversity in the edible mushroom

Stropharia rugoso-annulata.

ACKNOWLEDGMENTS — We thank J.M. Olivier (INRA Bordeaux, France) for helpful com-

ments on this work and Dr. N. Smirnoff (University of Exeter, UK) for reviewing the English of the

manuscript.

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SOME PHYSICAL AND CHEMICAL FACTORS AFFECTING

ASEXUAL REPRODUCTION OF THREE PYTHIUM SPP.

Hani M. A. ABDELZAHER*, Mohamed A. ELNAGHY*, Ezzat M. FADL-ALLAH*

and Saher S. ZOHRI*

*Botany Department, Faculty of Science, El-Minia University, El-Minia City, Egypt

ABSTRACT : Pythium aphanidermatum produced zoospores most abundantly at 15° C, whereas the

optima for P. oligandrum and Pythium “group F” were 15 and 25° C, respectively. The optimum

temperature of mycelial growth was 30° C for alll species tested. Optimum pH for mycelial growth and

zoospore production was 7 for tested fungi. Moderate osmotic potentials (-0.13~-0.27 MPa) appeared

to favour either mycelial growth or zoospore production. Low salinity (0.1-0.5% NaCl) was

satisfactory for mycelial growth and zoospore production.

KEY WORDS : mycelial growth, osmotic potential, pH, salinity, temperature, zoospores, Pythium

aphanidermatum, Pythium oligandrum, Pythium “group F”

RESUME : La température optimale pour la production de zoospores est de 15°C et 25°C

respectivement pour le Pythium aphanidermatum et le Pythium “groupe F”. La température optimale

de croissance est de 30° C pour toutes les espèces de Pythium testées. Un pH de 7, un potentiel

osmotique modéré (-0.13~-0.27 MPa) et une salinité faible (0.1-0.5 % NaCl) favorisent la croissance

et la production de zoospores.

MOTS-CLEFS : croissance mycélienne, potentiel osmotique, pH, salinité, température, zoospores,

Pythium aphanidermatum, Pythium oligandrum, Pythium “groupe F

INTRODUCTION

Asexual reproduction in most species of Pythium takes place by means of

zoosporangia which produce zoospores under wet conditions. However zoosporangia can

germinate directly by germ tubes under certain conditions and especially when water is

lacking. A group of pythia were found to fail to produce zoospores even in the presence of

water (Plaats-Niterink, 1981). Many species of Pythium occurring in water basins and in

water streams spread by water currents from place to place. Water quality and environ-

mental factors proved to be important for zoospore formation by Pythium spp. (Abdelza-

her, 1994, Abdelzaher et al., 1994).

Abdelzaher et al., (1994) studied zoospore formation by three pythia namely: P

fluminum Park var. fluminum, P. marsipium Drechsler and Pythium “group F”. He repor-

Source : MNHN. Paris

268 H. M. A. ABDELZAHER, er al.

ted temperature, pH value, and osmotic potential affect zoospore formation of these three

species.

P. aphanidermatum (Edson) Fitzp. is a widespread fungal pathogen occurring

mainly in warm regions (Middeleton, 1943; Waterhouse, 1967, 1968; Plaats-Niterink,

1981 and Dick, 1990). Data concerning zoospore formation by this fungus under various

environmental conditions could be of importance for our knowledge of its ecological

distribution. P. oligandrum is an aggressive mycoparasite of several fungi (Deacon &

Henry, 1978 and Plaats-Niterink, 1981) and is thus used in the biological control of some

fungal diseases (Plaats-Niterink, 1981). This role verifies its use in this study in order to

understand factors affecting its establishment in soils. On the other hand Pythium “group

F”, a typical aquatic fungus, relies on zoospores for dissemination and factors affecting

their formation is no doubt important.

The aim of this work was to examine the effect of temperature, hydrogen-ion

concentration, osmotic potential and salinity on mycelial growth and zoospore produc-

tion by P aphanidermatum, P. oligandrum and Pythium “group F”.

MATERIALS AND METHODS

P. aphanidermatum, P. oligandrum were isolated from an agricultural field loca-

ted close to El-Ibrahimia canal near El-Minia City, Egypt. Pythium “group F" was

isolated from the water of this canal at the same site. Baiting techniques using cucumber

seeds, filter paper discs and Paspalum leaf blades were used for isolation (Abdelzaher,

1994, 1995; Abdelzaher er al., 1994; Pittis & Colhoun, 1984). Fungi were inoculated in

Petri-dishes containing 3 % water agar until the developing colonies reached about 4 cm

diam. Then autoclaved pieces (3x14 mm) of Zea mays leaf blades were laid over each

colony and in contact with the actively growing margin and incubated at 25° C. After 24h

incubation, colonized Zea mays leaf blades were transferred to Petri-dishes containing 10

ml of sterilized distilled water to determine the effect of temperature on zoospore

production.

To study the effect of Hydrogen-ion concentration, colonized Zea mays leaf

blades were transferred to Petri-dishes containing 10 ml of 0.05 M acetate or Tris-HCI

buffers previously adjusted to pH values from 4 to 9. Another experiment using solutions

of different pH values were prepared using HCl and NaOH. All solutions and buffers were

sterilized by filtration

To study the effect of osmotic potential, the method of Abdelzaher et al., (1994)

was used. Colonized Zea mays leaf blades were transferred to Petri-dishes containing 10

ml of sterilized mannitol solution dissolved in distilled water, to give different osmotic

potentials. Distilled water was used as a control (Zero MPa osmotic potential).

To study the effect of salinity, colonized Zea mays leaf blades were transferred to

Petri-dishes containing 10 ml portions of autoclaved NaCl solutions with different

concentrations.

Cultures were observed microscopically along the Zea mays leaf margin through

the lid of the Petri-dish at different intervals. P. aphanidermatum has sporangia consisting

of terminal complexes of swollen hyphal branches of varying lengths and which produce

vesicles at the top of evacuation tubes. P oligandrum has spherical sporangia with complex

subglobose elements and these produce vesicles at the top of evacuation tubes. But

Pythium “group F” has filamentous, non-inflated zoosporangia which produce vesicles at

the top of long evacuation tubes. Each active vesicle contains zoospores ready to be

Source : MNHN. Paris

ASEXUAL REPRODUCTION OF PYTHIUM 269

discharged after a specific time. An active vesicle can be determined by its zoospore

differentiation just before discharge. To record numbers of such active vesicles along the

leaf margin, the methods of Saleem $ Dick (1990) and Abdelzaher et al. (1994) were

followed. A mean value was calculated for each treatment and expressed as number of

vesicles per mm. The whole experiment was repeated twice with three replicates.

To examine the effect of temperature on mycelial growth, 15 ml of cornmeal-

agar (CMA) were placed in 9 ml Petri-dishes, inoculated with the test fungus and

incubated at different temperatures. To study the effect of hydrogen-ion concentration,

2 % agar was adjusted to different pH values using the buffer systems described previously.

Mycelial discs (5.0 mm diam) of the test fungi were cut from the periphery of 3 d old

cultures, inoculated in the center of each assay plate and then incubated at 28+ 1? C.

The effect of osmotic potential and salinity were studied using 2 % agar prepared

according to the experimental conditions required as described previously for zoospore

formation.

RESULTS

Figure 1 shows zoospore production was generally high after 24 h incubation

and it then gradually decreased with time. P aphanidermatum started to produce zoospo-

res after 24 h incubation at 15, 20, 25 or 30? C. At lower temperatures (5, 10 and 15? C),

zoospore production continued for several days, till the end of the experimental period

whereas at high temperatures production declined drastically. P. oligandrum began to

produce zoospores after 24 h at 25, 30 and 35° C but at lower values (10, 15, 20° C) it

produced zoospores only after 48 h. Low temperatures supported a longer time of

zoospore production by P. oligandrum. Pythium “group F” started zoospore production

after 24 h between 5 and 35° C, but it failed to produce zoospores at 40° C. It follows that

low temperatures supported a longer time of zoospore production than higher ones.

Figure 2 shows that production of zoospores was inhibited at pH 4 in the case of

P. aphanidermatum and P. oligandrum. All pythia tested could however produce zoospores

within the pH range 5-9. Exception is P aphanidermatum which could not produce

zoospores at the higher value. Optimum pH for zoospore production was 7 for the three

fungi used. In solutions prepared, using HCl or NaOH for pH adjustment, all pythia

tested produced zoospores from pH 5.5-9.5 but their formation was inhibited at pH 10.5

(data not included).

Figure 3 represents the effect of osmotic potential on zoospore production for

the three species. Distilled water (zero osmotic potential) was favourable for good produc-

tion by tested fungi. In distilled water containing mannitol to adjust osmotic potential

between -0.13 MPa and -1.00 MPa, also all species were able to produce zoospore between

-0.13 to -0.47 MPa but not above this range; recorded optimum was at osmotic potential

at -0.27 MPa.

Figure 4 shows that production of zoospores by P aphanidermatum was inhibi-

ted by 1 % NaCl. P oligandrum and Pythium “group F” could produce zoospores at 2 %

NaCl while at higher concentrations this process was inhibited. The optimum concentra-

tion was 0.2 % NaCl.

Tables 1, 2, 3 and 4 respectively represent minimum, optimum and maximum

valués of temperature, hydrogen-ion concentration, osmotic potential and salinity for

mycelial growth of each of the three fungi. The minimal temperatures of P. aphaniderma-

tum, P. oligandrum and Pythium “group F” were 15, 10 and 10° C, respectively while their

Source : MNHN. Paris

270 H. M. A. ABDELZAHER, er al.

Pythium spp. Daily growth rate [Diameter increase / 24 h (mm)]

SC 102€ |) 15262 | 20°C 51, 25264 30:67 168526; | 40°C

P.aphanidermatum 0 0 4* 12 29 34 26 16

P. oligandrum 0 3 8 13 16 24 6 3

thium "group F" 0 3 5 8 10 13 11 0

Table 1. Effect of temperature on mycelial growth of three Pythium spp. in CMA medium

Tableau 1. Effet de la température sur la croissance mycélienne de trois Pythium sp sur milieu CMA.

* All results are the mean of three replicates with standard errors not exceeding 0.5.

Pythium spp. Daily growth rate [Diameter increase / 24 h (mm)]

pH4 pH5 pH6 pH7 | pH8 pH9

P.aphanidermatum 0 0 18* 28 27 20

P. oligandrum 0 0 8 24 15 9

Pythium "group F" 0 0 2

Table 2. Effect of pH value on mycelial growth of three Pythium spp. cultivated in CMA medium at

Tableau 2. Effet du pH sur la croissance mycélienne de trois Pythium sp. sur milieu CMA à 28° C.

* All results are the mean of three replicates with standard errors not exceeding 0.5.

Pythium spp.

Daily growth rate

Diameter increase / 24 h (mm)]

Dist. H2O

-0.13 MPa

-0.27 MPa

-0.47 MPa

-0.1 MPa

P.aphanidermatum

P. oligandrum

35%

16 4

Pythium "group F" 12 12 11

Table 3. Effect of different osmotic potentials on mycelial growth of three Pythium spp. cultivated in

CMA medium at 28° C.

Tableau 3. Effet du potentiel osmotique sur la croissance mycélienne de trois Pythium sp. sur milieu

CMA à 28° C.

* All results are the mean of three replicates with standard errors not exceeding 0.5.

Source : MNHN. Paris

ASEXUAL REPRODUCTION OF PYTHIUM 271

Pythium spp. Daily growth rate [Diameter increase / 24 h (mm)]

Control

P.aphanidermatum

P. oligandrum

Table 4. Effect of NaCl concentration on mycelial growth of three Pythium spp. cultivated in CMA

medium at 28° C.

Tableau 4, Effet de la concentration en NaCl surla croissance mycélienne de trois Pythium sp sur

milieu CMA à 28° C.

* All results are the mean of three replicates with standard errors not exceeding 0.5.

optimum was at 30° C. Maximum temperature was over 40° C for P aphanidermatum and

P. oligandrum but it is slightly lower (35-40° C) for Pythium “group F”.

Experiments of the effect of pH values using buffers and 2 % agar on mycelial

growth at 28° C, (Table 2) showed growth to occur within the range of 6~9 with a recorded

overall optimum at pH 7. However growth was inhibited at lower values.

The effect of osmotic potential on mycelial growth at 28° C (Table 3) indicate similar

responses in tested pythia. No growth occurred at -1.00 MPa, whereas at other tested

osmotic potentials (-0.13~-0.27 MPa), good growth was observed at an optimum at -0.13

MPa.

The influence of NaCl concentration on mycelial growth at 28° C is shown in

table 4. At a high concentration (3 %), P. aphanidermatum and Pythium “group F” grew

poorly while P. oligandrum made no growth. At concentrations ranging from 0.1~0.5 %

NaCl, good growth was obtained in all species; recorded optima were at 0.5, 0.4 and 0.1 %

NaCl for P aphanidermatum, P. oligandrum and Pythium “group F”, respectively. Mycelial

growth decreased at concentrations above 1 %.

DISCUSSION

One of the important roles of zoospores is to serve for the dissemination of

fungi. In aquatic pythia this function is affected by water quality (Tomlinson, 1958 a, b).

The present investigation clearly underline that water temperature, pH, osmotic potential

and salinity are important parameters affecting zoospore formation and dissemination by

Pythium spp.

Minimum temperatures for mycelial growth ranged between 10-15° C. P. apha-

nidermatum and Pythium “group F” produced zoospores at 5° C indicating optimum

temperatures for zoospore formation is not necessarily coinciding with that of mycelial

growth. At higher values, only P oligandrum could produce a small amount of zoospores

(at 40° C) for a short time, while P aphanidermatum and Pythium “group F” could not

produce zoospores at 40° C.

Source : MNHN. Paris

272 H. M. A. ABDELZAHER, et al.

Acidic solutions (pH 4, 5) proved unsuitable for growth of all species. Such

allowed the production of small amount of zoospores in only Pythium “group F”. This

result is in harmony with Suzuki (1961), Suzuki & Takashi (1966) and Abdelzaher (1994)

statements that “zoospores of Pythium species were very rare in acidotrophic and polluted

ponds and lakes". For this reason, acidic waters or soils do not support Pythium growth or

its zoospore formation. Neutral pH was found to provide good condition for mycelial and

zoospore formation by Pythium species.

Moderate osmotic potential appeared to favour zoospore production. This

phenomenon is correlated with the influence of osmotic strength on the formation of the

vesicles since at higher concentration levels, although fungi could produce vesicles, these

failed to produce zoospores. Harvey (1952), in his study on the role of fungi in stream

sanitation and processes of natural purification, concluded that no Pythia had been

detected in heavily polluted waters and had seldom been found in partially polluted places.

For the above reason, it is speculated that highly polluted soil and water with high osmotic

potential act as a barrier against zoospore production by Pythium spp.

A concentration of 0.2 % NaCl was found suitable for zoospore production.

Above this level a drastic decrease in this process was recorded. This phenomenon can be

explained on the basis of the effect of salinity on vesicles formation. Pythium vesicle has a

thin membrane sensitive to the surrounding medium. This permeable membrane needs a

special NaCl concentration for complete differentiation. A level of 0.2 % NaCl matched

the ideal concentration and appeared to favour zoospore production.

We can conclude that water quality influence mycelial and zoospore production

by Pythium spp. Highly acidic, heavily polluted and saline waters do not support mycelial

and zoospore formation by these fungi. However a generalization cannot be made and

variation can occur throughout pythia.

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Source : MNHN. Paris

PEN) == T —— c MMC a.

| pena aphdnidermatum

vesicles/mm

Mean no. of zoosporangial

Mean no. of empty

zoosporangia/mm

Time (days)

Mean no. of empty

zoosporangia/mm

Time (days)

Fig. 1. — Effect of temperature on zoospore production by Pythium spp.

Fig. 1. — Effet de la température sur la production de zoospores par Pythium sp.

Source : MNHN, Paris

aphañtdermatum

Mean no. of

zoosporangial

vesicles/mm

Mean no. of empty

zoosporangia/mm

"ythiuii "group E"

lean no. of

zoosporangial

vesicies/mm

Time (days) 6

Effect of hydrogen ion concentration on zoospore production by Pythium spp. at 28° C.

. — Effet du pH sur la production de zoospores par Pythium sp.

Source : MNHN, Paris

an no. of

angial

zoospo

vesicles/mm

d |

E Dist. H20

010.13 MPa |

E 0.27 MPa |

1047 MPa |

El 1.00 MPa

Mean no of empty

zoosporangia/mm

vesicles/mm

Mean no. of

zoosporangial

Time (days)

Fig. 3. — Effect of osmotic potential on zoospore production of three Pythium spp. at 28° C.

Fig. 3. — Effet du potentiel osmotique sur la production de zoospores par trois Pythium sp. à 28° C.

Source : MNHN. Paris

Mean no. of empty

Mean no. of

zoosporangial

Mean no. of

Zoosporangial

zoosporangia/mm

T dphañideratum

vesicles/mm

la Dist. H20 |

Do10% |

| M 0.20%

|m 0.30%

00.40%

| B 0.507;

| 1%

à | H2%

Time (days) | Bas

Pythium

"group F^ |

veasicles/mm

Sm >

A 6

Time (days)

Effect of salinity on zoospore production by Pythium spp. at 28° C.

Effet de la salinité sur la production de zoospores par Pythium sp. at 28° C.

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ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

The Mycota. A comprehensive treatise on Fungi as experimental systems for basic and applied research.

K. ESSER, P. A. LEMKE Ed.

Vol. III. Biochemistry and molecular biology. R. BRAMBL & G. A. MARZLUF Ed. Springer Verlag,

1996. 89 figures, 27 tableaux.

Aprés que les domaines de la biochimie et de la génétique des champignons aient été

longtemps séparés et traités par des spécialistes différents, dans des laboratoires spécialisés, il apparaît

maintenant que la connexion entre ces deux domaines est réalisée, (protocoles expérimentaux,

approches intellectuelles et techniques), par le biais de la biologie moléculaire.

Le présent volume est une sorte de synthèse des résultats obtenus par ces méthodes, dans la

connaissance des champignons. Il porte sur la biochimie et la biologie moléculaire des champignons

qui, couplées aux outils de la génétique, ont permis de répondre à un certain nombre d'interrogations

et qui ont aussi souvent conduit à de nouvelles conceptions et soulevé de nouvelles questions.

La diversité des questions abordées par cette approche multiple conduit à un ouvrage

quelque peu hétérogène, où l'on trouve cependant un grand nombre d'informations synthétiques

nouvelles.

Il est subdivisé en quatre parties : 1) Biochimie et aspects moléculaires des composants

cellulaires (avec quatre chapitres portant sur la réplication des chromosomes des levures, les mem-

branes plasmiques et ATPases, les ATPases mitochondriales et vacuolaires, les mécanismes d'entrée

des protéines dans les mitochondries), 2) Réponse aux facteurs influengant le métabolisme (RNA

polymérases et facteurs de transcription, régulation du catabolisme de l'allantoine chez S. cerevisiae,

« heat shock » protéines et réponse au stress, régulation de l'expression des gènes par le pH....). 3)

Biologie moléculaire des hydrates de carbone complexes et de la lignine (biosynthése de la chitine et

processus morphogénétiques, complexes cellulases et amylases, enzymologie et biologie moléculaire

de la dégradation de la lignine), 4) Aspect moléculaire des voies biochimiques (contróle des voies de

biosynthese des acides aminés, des polyamines, régulation du métabolisme de l’azote et du carbone,

régulation du catabolisme des acétamides et du métabolisme du tréhalose, biochimie et biologie

moléculaire des sterols),

La diversité des thémes abordés donne une image assez large des résultats importants

obtenus par cette approche pluridisciplinaire, appliquée à l'étude des champignons. Trente huit

chercheurs ont collaboré à ce livre, tous spécialistes des domaines concernés. Il en résulte un ouvrage

dense, trés riche en informations, avec une bibliographie trés abondante à chaque chapitre, terminé

par un index des genres et des sujets (8 pages). Il constitue certainement un ouvrage de référence pour

chercheurs et étudiants mycologues, tant pour le bilan des connaissances acquises qu'il apporte que

pour les nouvelles voies de recherche qu'il peut suggérer.

M. F. ROQUEBERT

Source : MNHN, Paris

280 ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

DAUGHTREY M. L., WICK R. L. £ PETERSON J. L., 1995 — Compendium of

Flowering Potted Plants Diseases, Second Edition. APS Press, 3340 Pilot Knob Road, St.

Paul, MN 55121-2097, FAX (612) 454-0766. Paperback, 128 pp., 60 black & white

illustrations, 248 color photographs. Price US $ 29,00, elsewhere $ 37,00.

L'illustre série des « Compendium des Maladies Végétales » publiées par la Société Amé-

ricaine de Phytopathologie vient de s’enrichir de trois titres additionnels mais dont l’un représente une

deuxième édition ; c'est celui des affections des plantes à fleurs « en pots ».

Dans la préface, les auteurs précisent que ce Compendium rassemble des informations sur

les maladies d’un groupe majeur de plantes horticoles, à savoir les plantes à fleurs cultivées en serres.

L'importance économique de ce secteur agricole dans les pays industrialisés, n’est plus à souligner.

Ainsi aux Etats-Unis et en 1993, la commercialisation de ces plantes a représenté un chiffre d’affaires

voisin du milliard de dollars. On note une dominance de poinsettias et de géraniums sur le marché

Nord-Américain alors que la diversité des espèces proposées en Europe est comparativement plus

marquée. Également, en Europe, les ventes sont plutôt étroitement liées au calendrier des jours légaux

fériés à connotation liturgique, saisonnières ou sociales, ce qui n’est pas le cas pour les États-Unis.

Il en résulte que la prévention et le management des affections de ces espèces végétales

demeurent le souci majeur des producteurs des plantes en pots. En effet, les maladies affectant ces

végétaux induisent des pertes directes suite à la mortalité des plants ou plus fréquemment, en raison

de la détérioration des qualités esthétiques réduisant ainsi la valeur marchande des produits commer-

cialisés. Le but de ce Compendium est donc de fournir aux horticulteurs, un outil de référence

permettant un diagnostic aisé, rapide et objectif d'une affection particulière. Il devrait également

conduire à l'élaboration de mesures de prévention et de programmes réalistes de management des

maladies traitées dans cet ouvrage.

La première impression qui se dégage d’une lecture rapide du texte proposé est que

l'ouvrage représente un concentré d'informations de natures diverses : taxonomique et biogéographi-

que pour les espèces végétales commercialisées, phytopathologique, épidémiologique et de ma

ment pour les agents infectieux majeurs de ces plantes à fleurs en pots. D'ailleurs, la majorité de ces

agents s'avérent étre des champignons. Le texte est accompagné d'une imposante iconographie en

noir et blanc des symptómes et des particularités morphologiques des agents infectieux considérés.

L'iconographie en couleur ne fait nullement défaut : trente-deux planches rassemblent moins de trois

cents photos reproduisant fidélement la majorité des maladies affectant les divers organes végétaux

des espéces en circulation sur le marché.

Aprés une intéressante préface soulignant les objectifs majeurs de ce Compendium, les

auteurs proposent un guide rapide des espéces végétales à fleurs en pots et des maladies infectieuses

respectives. Le corps de l'ouvrage est subdivisé en deux parties inégales. La première, comparative-

ment la plus importante, se focalise sur ces affections en fonction du groupe taxonomique des agents

responsables : champignons et organes végétaux attaqués, bactéries, virus et nématodes. La deuxiéme

partie passe en revue les maladies non infectieuses et les dégáts induits par les nématodes. On trouve

ensuite un glossaire des termes cités, suivi d'un index des noms et des termes parus dans le texte.

Le guide pratique des plantes à fleurs en pots aux Etats-Unis (8 pages) traite de prés de

quarante genres de plantes supérieures ; la correspondance « nom scientifique et nom commun »,

réunis dans un tableau, fournit un aperçu de la diversité biologique de ce groupe de plantes à fleurs.

Celui-ci comporte une part importante d'espéces végétales exotiques pour le continent nord-

américain. On peut citer comme exemple les Bougainvillea natifs de l'Amérique du Sud, le Campanula

carpatica qui comme son nom l'indique est originaire des Carpathes, le Catharanthus roseus de

Madagascar ou le Gardenia angusta de Chine. Pour chaque espèce végétale, une fiche synoptique

propose des informations sur la plante et la liste de ses affections.

La premiére partie correspond au corps de l'ouvrage, oà sont majoritairement traitées les

maladies induites par des champignons (pages 9-47), mais également les affections d'origine bacté-

riennes (47-58), virales (58-72) ou provoquées par des nématodes (72-76). Une courte mais excellente

introduction vise à introduire le lecteur dans le monde des champignons en soulignant les liens

hôtes-pathogènes particuliers à ce groupe de micro-organismes ; ce chapitre est accompagné des

Source : MNHN. Paris

ANNALYSES BIBLIOGRAPHIQUES 281

références des livres marquants en mycologie, taxonomie et phytopathologie des champignons. Les

maladies induites par ces micro-organismes sont ensuite traitées en fonction de l'organe végétal

développant les symptômes respectifs et du groupe taxonomique des agents responsables : maladies

foliaires, nécrose des tiges, maladies des racines et des collets, désordres induits par des Oomycétes, des

mildious, rouilles et, enfin, les maladies vasculaires

La fiche signalétique de chaque affection comporte des informations sur sa répartition

géographique, les symptômes, l'agent pathogène et sa marge d'hôtes, son épidémiologie, le manage-

ment de la maladie et une sélection de références bibliographiques appropriées, sans oublier l'icono-

graphie associée visualisant les symptômes. C'est un tour d'horizon presque complet des particula-

rités de chaque maladie, accompagné de recommandations pour la prévention et des suggestions pour

le contróle. La bibliographie partielle permet d'aller plus loin dans la connaissance d'une affection

quelconque. Les informations d'ordre taxonomoique relatives aux champignons tiennent compte des

études récentes dans ce domaine. Une série de tableaux présente de maniere didactique, les informa-

tions sur l'hôte, le pathogène et la maladie pour certains types d'affections ; ces tableaux facilitent un

repérage rapide d'une maladie végétale à partir des noms respectifs du pathogène ou de l'hôte. Ces

synthéses synoptiques présentent un caractére trés informatif.

Le glossaire rapporte sur quatre pages une définition de la multitude des termes scientifiques

€t techniques cités dans le texte. Le texte accompagnant chaque terme est concis, pertinent et bien

réfléchi ; il sera fortement utile pour les non spécialistes mais il viendra également rafraîchir la

mémoire des personnes averties. Enfin, l'index couvre également quatre pages mais sur trois colonnes

au lieu de deux comme dans le reste du texte.

De méme que pour les numéros antérieurs de cette série, proposée par la Société Américaine

de Phytopathologie, ce Compendium va rapidement se révéler un outil indispensable pour la

connaissance des maladies des plantes à fleurs cultivé en pots. Ce document synthétique de trés haute

qualité et richement illustré trouvera sa place dans toutes les bibliothèques des horticulteurs, quel que

soit leur chiffre d'affaires et également dans celles des spécialistes en horticultures et en phytopatho-

logie de cet ensemble végétal. C'est le fruit d'une large coopération de spécialistes de divers continents

sollicités par les trois auteurs pour réaliser des textes intégrants les informations les plus récentes et

surtout d'iconographies de trés haute qualité. L'ouvrage sera aussi largement consulté méme par des

mycologues et des phytopathologistes avertis ; ceux-ci pourront aisément trouver des informations de

première importance sur une affection déterminée pour un groupe d'espéces végétales économique-

ment important en horticulture.

J. MOUCHACCA

CARUSO F. L. & RAMSDELL D. C., 1995 — Compendium of Blueberry and Cranberry

Diseases. APS Press, 3340 Pilot Knob Road, St. Paul, MN 55121-2097, FAX (612)

454-0766. Paperback, 117 pp., 73 black & white illustrations, 193 color photographs. Price

US $ 35,00 ; elsewhere $ 44,00.

Ce Compendium des maladies et des affections des plantes à baies est destiné à servir de

guide pratique pour les cultivateurs, conseillers agronomiques, consultants privés, étudiants, spécia-

listes de transformations et phytopathologistes des plantes. Il a été rédigé essentiellement pour des

intervenants ayant une connaissance limitée en horticulture et en phytopathologie, mais il contient

néanmoins suffisamment de détails, pour se révéler utile aux étudiants et aux professionnels. Cet

ouvrage met l'accent essentiellement sur les maladies affectant ce groupe de plantes à baies en

Amérique du Nord. Sa parution vient d'ailleurs compléter deux autres excellents documents sur ce

sujet, également édités aux États-Unis, et qui sont le « Highbush Blueberry Production Guide et le

« Virus diseases of Small Fruits ».

Ce livre représente les efforts déployés par une grande équipe de spécialistes reconnus.

sollicités par les deux auteurs pour leurs compétences respectives, comme l'atteste la longue liste des

collaborateurs remerciés dans la préface, tous évidemment originaires des Etats-Unis. L'introduction

Source : MNHN, Paris

282 ANALYSES BIBLIOGRAPHIQUES

(4 pages) est une excellente synthèse sur la « botanique » de ces plantes à baies dont la culture, dans

ce pays, remonte au début du 19° siècle. Ces espèces végétales appartiennent toutes au genre

Vaccinium, de la famille des Ericaceae. Celui-ci est actuellement subdivisé en quatre sections d'impor-

tance économique variable en agriculture : les vrais bleuets (true blueberries) relèvent du sous-genre

Cyanococeus et les canneberges du sous-genre Oxycoccus ; les « lingonberries » appartiennent aux

sous-genre Virisidaea et les myrtilles (bilberries) au sous-genre Myrtillus. Des représentants sauvages

des bleuets, cranneberges et myrtilles se rencontrent en Europe et en Amérique du nord alors que les

vrais bleuets ont une origine exclusivement nord-américaine. Cet intéressant chapitre botanique est

une synthèse des particularités phylogénétiques, morphologiques et culturales de ces plantes à baies.

Des dessins au trait permettent une reconnaissance des représentants de ces quatre groupes végétaux.

Une liste fournie de références bibliographiques d'ouvrages afférents à ce sujet, complete ce chapitre.

Le corps de l'ouvrage est divisé en trois parties inégales. La première est comparativement la

plus importante ; elle traite des affections induites par des agents biotiques tels que champignons,

bactéries, virus, nématodes et cuscutes (dodder). Cette partie est subdivisée en quatre sections sur la

base de critères botanique. Pour ces quatre groupes de plantes à baies, les maladies d'origine fongique

s'avèrent et de loin, les plus marquantes (pages 7-48), en comparaison aux affections induites par des

bactéries (2 pp.), virus (10 pp.) et nematodes (1 page). D'autre part, les maladies concernant les bleuets

sont traitées sur un nombre de pages équivalent à celui des altérations propres aux canneberges. On

peut toutefois déplorer une absence de tableau synthétique pour chaque type de plante à baie et un

tableau comparatif des affections respectives majeures. Ces tableaux didactiques soulignent les

relations hôtes-parasites communes ou particulières ; en outre, ils facilitent un repérage rapide d’une

affection donnée, surtout à partir du nom du pathogène.

La fiche signalétique relative à chaque maladie comporte une courte introduction histori-

que, la description des symptômes développés par le pathogène, des informations sur ce dernier, le

cycle de la maladie et son épidémiologie et, enfin, des indications sur les modes de contrôle, sans

oublier l'iconographie respective ; l'ensemble s'accompagne de quelques références bibliographiques

critiques. Chaque fiche a été préparée par un spécialiste du sujet (rarement deux) mais un même

spécialiste peut être l'auteur de plusieurs fiches. Ainsi le Dr R. D. Milholland est l'auteur de la fiche

signalétique sur la pourriture des racines due au Phytophthora et du flétrissement des tiges due au

Botryosphaeria ; il est également coauteur des fiches concernant le flétrissement dû au Botrytis, la

momification des baies, le mildiou, le flétrissement des tiges dû au Phomopsis et, enfin, de la pourriture

des fruits. Des planches de dessins au trait rendant compte du cycle de vie de certains pathogénes,

représentent un complément d'information pédagogique judicieux, pour la compréhension de l'épi-

démiologie de la maladie par des personnes non initiées. Les champignons responsables de ces

affections appartiennent aux divers groupements taxonomiques majeurs y compris des basidiomycè-

tes sensu stricto.

Les plantes à baies sont apparemment peu attaquées par des bactéries mais comparative-

ment plus par des virus ou des organismes proches des mycoplasmes. Ces espéces végétales font

également l'objet d'attaque par quelques espéces de nématodes racinaires mais apparemment sans

conséquence économique majeure. La deuxième partie de l'ouvrage passe en revue les altérations

d'origine abiotique telles que désordres nutritionnels, stress hydrique, forte salinité ou ceux provoqués

par le gel. Enfin, la troisième partie fournit des renseignements sur les critères de qualité définissant les

normes phytopathologiques en vigueur pour les variétés commercialisés aux États-Unis. L'ouvrage se

compléte par un glossaire trés informatif (4 pages) des termes scientifiques cités dans le texte y

compris une définition de la « bouillie bordelaise » et d'un champignon entomogène et un index des

noms et termes cités.

La présentation du texte sur deux colonnes permet une lecture confortable de l'ouvrage ; elle

permet également un balayage visuel rapide lors de la recherche d'une information donnée. Les

qualités de présentation et d'impression du texte et des documents iconographiques restent confor-

mes à celles des numéros précédents ; elles sont donc de haute qualité.

Les titres antérieurs de cette série de Compendium ont connu un énorme succés aupres des

agents économiques intéressés par les contenus respectifs. Le présent Compendium des maladies des

plantes à baies sera sans conteste également fortement apprécié par tous les intervenants dans cette

Source : MNHN. Paris

ANNALYSES BIBLIOGRAPHIQUES 283

branche de l'agriculture dont l'importance économique est loin d’être négligeable aux États-Unis. Il

en sera sans doute de méme en dehors de ce grand pays, puisque ces mêmes espèces végétales font

actuellement l'objet de cultures aux quatre coins du globe.

J. MOUCHACCA

Source : MNHN. Paris

Commission paritaire 16-4-1986 - N°

Sortie des presses le 31 ocotobre 1997 - Imprimé en France

Editeur : A.D.A.C. (Association des Amis des Cryptogames)

Président : D. Lamy ; Secrétaire : B. Dennetiere

Trésorier : M™ E. Bury; Directeur de la publication : H. Causse

58611 - Dépôt légal 4° trimestre 1997 - Imprimerie F. Paillart

Source : MNHN. Paris

Société Francaise de Systématique <3

La Société Française de Systématique réunit les systématiciens ou les personnes

intéressées par la Systématique et les informe en publiant un Bulletin. Elle convie ses

membres à des colloques annuels transdisciplinaires, au cours desquels les systématiciens

et d'autres scientifiques peuvent s'exprimer et débattre

Cotisation annuelle: 100F

Demande d'adhésion à adresser au:

Secrétariat de la Société Française de Systématique, 45 rue Buffon, F-75005 Paris.

CCP 7-367-80 D PARIS

La Société édite aussi la série Biosystema.

Prix TTC du Biosystema (France, Etranger): 150 FF, membre SFS : 100 FF.

Biosystema 1 - Introduction à la systématique zoologique - (Concepts. Principes, Méthodes) par

L. Matile, P. Tassy & D. Goujet. 1987.

Biosystema 2 - Systématique Cladistique - Quelques textes fondamentaux. Glossaire. Traduction

et adaptation de D. Goujet, L. Matile, P. Janvier & J.P. Hugot. 1988

Biosystema 3 - La systématique et l'évolution de Lamarck aux théoriciens modernes. par

S. Lovtrup. 1988.

Biosystema 4 - L'analyse cladistique: problème et solutions heuristiques informatisées, par

M. d'Udekem-Gevers. 1990.

Biosystema 5 - Les introuvables de J.B. Lamarck- Discours d'ouverture du cours de zoologie et

articles du Dictionnaire d'Histoire naturelle. Edition préparée par D. Goujet. 1990.

Biosystema 6 - Systématique et Ecologie, par R. Barbault, Cl. Combes, F. Renaud, N. Le Brun

& A. Dubois. Edition coordonnée par J.P. Hugot. 1991

Biosystema 7 - Systématique et Biogéographie Historique. Textes historiques et

méthodologiques. Traduction et adaptation de P. Janvier, L. Matile & Th. Bourgoin.

1991.

Biosystema 8 - Systématique et Société. Edition coordonnée par G. Pasteur. 1993.

Biosystema 9 - Les Monocotylédones, par J. Mathez. 1993.

Biosystema 10 - Systématique botanique : problèmes actuels. Edition coordonnée par O. Poncy.

1993.

Biosystema 11 - Systématique et Phylogénie: modèles d'évolution biologique. Edition

coordonnée par P. Tassy et H. Leliévre. 1994.

Biosystema 12 - Phylsyst: logiciel de reconstruction phylogénétique, par I. Bichindaritz,

S. Potter & B. Sigwalt +. 1994.

Biosystema 13 - Systématique et Biodiversité. Edition coordonnée par Th. Bourgoin. 1996.

Biosystema 14 - Systématique et Informatique. Edition coordonnée par J. Lebbe, en préparation.

Le Conseil de la SFS, XII 1995

Source : MNHN, Paris

SOMMAIRE

J. MOUCHACCA — Francis BUGNICOURT (1907-1991) „na... 202020200000.

R. COURTECUISSE — Liste Rouge des champignons menacés de la région

Nord--Passde-Calais:(France) m. dde riera JANET

C. DECOCK & L. RYVARDEN — Phellinus anchienatus (Basidiomycetes,

Aphyllophorales) sp. nov. from Brazil. ......... eese

A. ORTEGA. A. BIDAUD & R. MAHIQUES — Contribucion al estudio del ge-

nero Cortinarius en España peninsular. II parte :......................

C. ILLANA, G. MORENO, A. CASTILLO & J. R. GARCIA — Myxomycetes

de España. IX. Taxones críticos y raros para Extramadura..............

G. MORENO & J. MORNAND — Podaxis saharianus sp. nov. (Podaxales, Gaste-

romycetes), espèce nouvelle du Maroc .......,..,.:.... 44.4 nenn

M. BONENFANT-MAGNÉ, C. MAGNÉ, M.-A. ESNAULT & C. LEMOINE

— Caracterization of cultivated strains of a new edible mushroom : Stro

pharia rugoso-annulata. 1. Protein variability : 4.4...

H. M. A. ABDELZAHER, M. A. ELNAGHY, E. M. FADL-ALLAH &

S. ZOHRI — Some physical and chemical factors affecting asexual

reproduction of three Pythium spp. "

Analyses bibliographiques

Cryptogamie, Mycol, 1997, 18 (3) : 173-284