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AENA :

GAYANA

INSTITUTO (CENTRAL

PAOLA

ZOOLOGIA

LOS ASILIDOS DE CHILE

(Diptera -— Asilidae)

Por

JORGE N. ARTIGAS

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

C:HI EE

EDGARDO ENRIQUEZ FRÓDDEN

RECTOR

GALO GOMEZ O. SERGIO GALAZ U.

VICERRECTOR SECRETARIO GENERAL

Comisión editoro:

Mario Ricardi — Director del Instituto Central de Biología

Clodomiro Marticorena — Jefe del Departamento de Botánica

Roberto Donoso Barros — lee del Departamento de Zoología

GAYANA

INSTITUTO CENTRAL

BNO LOTA

ZOOLOGIA 970 No. Ll

LOS ASILIDOS DE CHILE

(Diptera - Asilidae)

Por

JORGE N. ARTIGAS

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO-GAY. Hist. de Chile, L 3 TANISiS)

END

AGRA DEGIMIENTOS Sucina.

ABREVIACIONES USADAS -.............

INRRODUCECIÓN ci ii

AUBUCTA "DE LOS ASILIDOS CHILENOS: dtiamiciódaoapccaicd bonos adidas

IMAPERTST. ESTUDIADO ......... 0%

O OS

BIOGRAFIA -DE. CHILE . ..........: ez

MISTRIBUCION DE LAS, ESPECTES PRESENTES EN, CHILE. ........

SISTEMATICA O A A

Géneros y especies de Asilidos

Clave para los géneros de Asili

Subfamilia Dasypogoninae

Género Alyssomyia Hull

Aratopogon Carrera

Greolestes ¡EullCcsa

Dasycyrton Philippi

Dasypecus Philippi

Deromyia Philippi ..

Graptostylus Hull ..

Hexameritia Speiser

Hypenetes Loew

Enilenos Món

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Beptochelina Ni: ¡Ben ii rip ter ES

Obelophorus SChIMEE*.... Meri sido (APA

Oberon Carrera E .Papavero is

Pritchardia a

Prolepsts, Walker "sti PAE O

Saropogon i0eW (mic. nioycocnis os lara TT EAS

Seylaticus” Lol Wir

Theromyia. Williston SN

Subfamilia Laphriinae

Género Andrenosoma RON OOO

Lamjprozona. LOW ato

Subtamilia:. Megapodinae. niicasccisan ases

Género Pronamopsis AO o ise AAA

Subfamilia ASUME. ad An

Género Atractocomas TD. Pon eS

Chilesus Bromley” atar ee a

Cratolestes al eel ASIS AO OMR

Cratopoda/ dol cd ate aaa RI

Eccritosias SCENE tl ca AN

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Lochmorhynchus Engel... A A

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MallopRora; Macquart ma EN

Megametopon! d. gen. sn usais So A

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Myaptex Hull

Nesiotes n. gen.

Nomomyia n. gen.

Philonerax Bromley

Rhadinosoma n. gen.

Stizolestes Hull

Zoticus n. gen.

lies

SUMMAR Y

Chile is a country whose political boundaries are conincident with geo-

graphical and ecological barriers, and as a result it has a distinct fauna of its

own. This study covers one element of the Chilean insect fauna, the robber

flies (Asilidae).

A total of 3,379 specimens were examined in this study; this material re-

presents most of the robber flies collected in Chile in the past 120 years, and

it was obtained from 29 museums in Norh America, South America, and

Europe. Included was material collected by L. Peña in remote and seldom

visited areas— the northern desert, the altiplano, Patagonia, and the Andes Cor-

dillera.

The morphology of asilids, including the structure of the male genitalia

were made for nearly every species, as these structures were found to be

of considerable taxonomic value. All the characters used in the keys and des-

criptions are explained, and most are illustrated.

Robber flies are predaceous on other insects, and their prey consists chiefly

of various Hymenoptera and Lepidoptera. They are generally insects of hot,

dray, open regions, but some of the species studied are from cold and rainy

areas like Patagonia and Magallanes. Nothing is known of the life histories of

the Chilean species, but the eggs of Pritchardia tertialis (Bromley) and the

pupa of Eccritosia rubriventris (Macquart) are described in this paper.

Four of the five asilid subfamilies occur in Chile —the Dasypogoninae,

Laphrinae, Megapodinae, and Asilinae; the Leptogastrinae (Leptogastridae

acc. Martin, 1968), are not present. This paper list 111 species in 40 genera;

40 of the species and 10 of the genera are described as new; 9 of the 111 spe-

cies were not recognized in the material examined, and their generic place-

ment is uncertain.

The systematic treatment of the Chilean species of robber flies comprises

the bulk of the paper. It includes a key to the genera, and keys to the species

in genera containing two or more Chilean species. There is a detailed descrip-

—)—

tion of each subfamily, genus, and species with complete synonomy and discu-

ssions of the nomenclatural problems encounteréd. The descriptions of indi-

vidual species are quite complete, with all the key characters illustrated

and distribution map for each species, and with a discussion of the

variation found. All the species descriptions contain information on the type;

neotypes were designated for a number of species where the type was lost,

and lectotypes were designated for a few species where mo type has been de-

signated in the original description. The nine species reported from Chile but

not recognized, are treated in a separate section, with descriptions and illus-

trations from the original descriptions. The paper is ilustrated by 504 figures,

arranges in 76 plates.

The distinctness of the Chilean asilid fauna is shown by the fact that 26

(659%,) of the genera and 88 (889%) of the 102 recognized species are restricted

to Chile (the 9 additional species, not recognized in the material studied, are

restricted to Chile but their generic placement is doubtfull). The other 14 ge-

nera contain species occuring outside of Chile (14 species, in 6 of these ge-

nera, are limited to Chile). Only 14 of the 102 recognized species of Chilean

asilids occur outside of Chile, and these occur chiefly im Argentina, Brazil

and Perú. None of the Chilean species occurs outside of South América, with

the possible exception of Mallophora freycineti Macquart (this species has

been reported from Honduras, but the identification is open to question).

SUMARIO

Chile es un país cuyas barreras geográficas son coincidentes con las ba-

rreras ecológicas, y como consecuencia tiene una fauna propia típica. Este

trabajo cubre un elemento de la fauna entomológica Chilena, los asilidos

(Asilidae), Diptera.

Durante el estudio fueron examinados 3,379 ejemplares, este material re-

presenta la gran mayoría de los ejemplares colectados en los últimos 120 años

y depositado en 29 museos en Norteamérica, Sudamérica y Europa. Se inclu-

yó material colectado por L. E. Peña en lugares remotos y poco visitados del

país —desierto del norte, altiplano, Patagonia, Cordillera de los Andes, etc.

La morfología de los asilidos, incluyendo las estructuras de la genitalia del

macho, se discuten en detalle; se efectuaron disecciones de las genitalias de

representantes de casi cada especie estudiada, concluyéndose que estas estruc-

turas tienen un positivo valor sistemático. “Todos los caracteres taxonómicos

usados están explicados y muchos de ellos ilustrados.

Los asilidos son predatores en otros imsectos, y sus presas son principal-

mente Hymenoptera y Lepidoptera. Son insectos propios de regiones tibias,

secas y abiertas, sin embargo varias especies estudiadas corresponden a regiones

frías y lluviosas como Patagonia y Magallanes. Nada se sabe de la biología de

las especies Chilenas, excepto por descripción de los huevos de Pritchardia

tertialis (Bromley) y la pupa de Eccritosia rubriventris (Macquart) que se

entregan en este trabajo.

Cuatro de las cinco subfamilias de Asilidae se encuentran representadas en

Chile: Dasypogoninae, Laphriinae, Megapodinae y Asilinae; la subfamilia Lep-

togastrinae (Leptogastridae acc Martin, 1968) no está representada. Este tra-

bajo considera 111 especies en 40 géneros; 40 de las especies y 10 de los géne-

ros son nuevos; 9 de las 111 especies anotadas no fueron reconocidas entre

el material estudiado y su ubicación genérica es incierta.

El tratamiento sistemático de las especies Chilenas de Asilidae forma el

grueso del trabajo. Incluye una clave para los géneros y claves para las espe-

cies de cada género que tenga dos o más especies. Contiene una descripción

detallada de cada subfamilia, género y especie, con una completa sinonimia

pe, E

y una discusión sobre los problemas pertinentes a cada taxon. La descripción

de cada especie es completa, y todos los caracteres usados en las claves están

explicados e ilustrados. Para cada especie se incluye un mapa de distri-

bución y una discusión sobre las variaciones que presenta. Todas las

descripciones de especies contienen información sobre el Typo; fueron designa-

dos Neotypos en varias especies en las cuales el Typo está perdido, y Lecto-

typos en algunas donde el Typo no fué designado originalmente. Las 9 espe-

cies señaladas para Chile pero que no fueron reconocidas en este trabajo, son

tratadas en forma separada con descripciones e ilustraciones de sus originales.

El trabajo está ilustrado con 504 figuras ordenadas en 76 láminas.

La especialidad de la fauna de asilidos Chilenos, se prueba por el hecho

de que 26 (659%) de los 40 géneros y 88 (88%) de las 102 especies reconocidas

son sólo conocidas para Chile (las 9 especies adicionales, no reconocidas en-

tre el material estudiado, son también específicas de Chile, pero su ubicación

genérica es dudosa). Los otros 14 géneros contienen especies que se encuen-

tran fuera de Chile (14 especies en 6-de estos géneros están limitadas a Chile).

Solamente 14 de las 102 especies de Asilidos Chilenos reconocidos, se encuen-

tran fuera de Chile, principalmente en Argentina, Brazil y Perú. Ninguna

de las especies Chilenas se encuentra fuera de Sudamérica, con la posible

excepción de Mallophora freycineti Macquart ( esta especie ha sido señalada

para Honduras, pero su identificación es discutible).

AGRADECIMIENTOS

Es imposible para mí agradecer a todas las personas que directa o indi-

rectamente han ayudado a la preparación de este trabajo. Baste con decir que

su ayuda ha sido desinteresada y constructiva. La ayuda prestada por el Dr.

Donald J. Borror de la Ohio State University compromete mi gratitud.

Quisiera expresar mi profundo agradecimiento a los curadores de los mu-

seos que facilitaron el material para estudio: Dr. Willis W. Wirth del

U. S. National Museum; Dr. A. Haltenbach del Naturhistorisches Museum en

Viena; Dr. Leonidad T'sacas del Museum National d'Histoire Naturelle en

París; Dr. Fr. Kuhlhem del Zoologische Sammlung des Bayerisches Staates in

Munchen; Dr. Paul H. Arnaud, Jr. de la California Aacademy of Sciences;

Dr. Nelson Papavero del Departamento de Zoología, Secretaria de Agricultura

de Brazil; Dr. E. Taylor del Hope Department of Zoology, University of

Oxford; Dr. Harold Oldroyd del British Museum (Natural History) en Lon-

dres; Dr. H. Schumann del Institute fur Spezielle Zoologie und Zoologisches

Museum en Berlin; Dr. J. R. Vockeroth del Entomology Research Institute,

Ottawa, Canadá; Dr. Laverne L. Pechuman del Department of Entomology,

Cornell University; Dr. Pedro Wygodzinsky del American Museum of Natural

History; Dr. Paul H. Freytag y Dr. Charles A. Triplehorh del Department of

Zoology and Entomology, The Ohio State University; Sr. Vicente Pérez del

Museo Nacional de Historia Natural, Chile; Dra. María Etcheverry del Centro

de Estudios Entomológicos, Universidad de Chile; Dr. Roland C. Ficher del

Department of Entomology, Michigan State University; Dr. Dillman S. Bullock

de la Escuela Agrícola El Vergel, Angol, Chile, y muy especialmente al Sr.

Luis E. Peña que donó su colección de Asilidae a nuestro Departamento de

Zoología de la Universidad de Concepción, Chile.

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ABREVIACIONES USADAS (*)

1A primera vena anal; primera celda anal

24 segunda vena anal; segunda celda anal

a ano (anus)

abpl pleurón abdominal

act acanthophorites

aed aedeagus (pene)

(AMNH) The American Museum of Natural History, N. Y.

ant antena

appr proceso apical de la funda del pene

atp hendidura tentorial anterior

B celda basal

b barba

bal esclerite basalar

bas basistylus

(BERL) Zoologisches Museum, Berlin

(BRAS) Dept. Etomología, Secr. Agricultura, Brazil

(BRIT) British Museum

C Cercus

ce líneas centrales del mesonotum

(CEE) Centro de Estudios Entomológicos U. de Chile

cd cardo

cl uña

ell collar

CG o P Carrera y Papavero

Co. cerro

Coll. colector

Cord. cordillera

(CORN) Dept. Entomology Cornell University

Cu vena cubital

EX, coxa anterior

EN, coxa media

EX: coxa posterior

ao E cavidad coxal anterior

Ox, € cavidad coxal media

(*) Las abreviaciones han sido inspiradas en la expresión inglesa, idioma en el cual fue original-

mente escrito este trabajo. Algunas abreviaciones aparecidas en '*Material Examinado”, han

sido tomadas directamente de las etiquetas y su significado es desconocido.

EH4 0 cavidad coxal posterior

D celda discal

dcb cerdas dorsocentrales

dist dististylus

dpr proceso dorsal de la funda del pene

dsclb cerdas discoscutelares

E este

e ojo

DB: Edgardo Oherens B.

ejap apodema eyaculador

ejp poro eyaculador

ejd ducto eyaculador

emp empodium

ep epandrium (tg,)

epp epiprocto

epm, mesoepimerón

emp, metaepimerón

eps, mesoepisternum

eps, metaepisternum

Est. estación FF CC

f cara

Fdo. fundo

fe giba facial

Fig. figura

fr frente

frh pelos frontales

fmg foramen magnum

fm fémur

ftbs espina (espolón) de la tibia anterior

ga galea

gen. miss. — falta genitalia

gen. prep — genitalia preparada, aclarada para estudio

gl glosa

gp gonopodo

h vena humeral

ha halter

hc callo humeral

Hda. hacienda

hpl hypopleurón

hym hymenópteros

hyp hypandrium (stn,)

hyph hypopharynge

= 129

(INCO)

AG:

Macq.

m—cu

(MCZ)

(MNAHN)

msg

Min

(MUNCH)

mxp

cerdas intraalares

Dept. Zoología, U. de Concepción, Chile

J. N. Artigas

J. T. Medina, colección en MNHN

kilómetro

lago

lacinia

labella

labrum

vena media

Macquart, P.J.M.

membrana

celda marginal

vena transversa medio-cubital

Museum of Comparative Zoology, Harvard University

meron

horquilla medial

millas

mentum

Museo Nacional de Historia Natural, Santiago

microsegmento

montaña

Zoologische Saamlung des Bayesrischen Staates, Munchen

Maxillary palpus

mystax

norte

pronotum

mesonotum

metanotum

notopleuron

cerdas notopleurales

borde oral

ocellus

cerdas ocelares

cerdas occipitales

ocellarium

cavidad oral

nivel del mar

Dept. Zool. and Ent., Ohio State University

Ent. Research Institute, Ottawa

Hope Dept., of Ent., Oxford University

celda posterior

E dy 1 e

pab cerdas postalares

(PAR) Museum National d'Hist. Nat., Paris

pb cerdas posteriores

pc callo posterior

pel paraglosa

ph faringe

pl, propleurón

pl, mesopleurón

pl, metapleurón

pn, postmesonotum

prb proboscis

poa área postocular

pob cerdas postoculares

pol lóbulo posteior

posls mancha lateral pos-sutural

pris mancha lateral pre-sutural

pscl postscutellum

psh funda del pene

pthl lóbulo protoráccico

ptpl pteropleurón

Pto. puerto

pul pulvillus

pwp proceso pleural del ala

0 quebrada

R vena radial

RM Ross € Michelbacker, colectores

Ff horquilla radial

r—M vena transversa radio-medial

Rs sector radial

Rsf horquilla del Rs

S sur

sap placa subanal

sal esclerite subanal

Sc subcosta

sG celda subcostal

scb cerdas scutelares

sel, mesoescutellum

sgl glándulas salivares

slpn, costados del pos—mesono-

tum

SM celda submarginal

sp, espiráculo protoráccico

PR 7, AE

SPa espiráculo mosotaráccico

st, prosternum

sto mesosternum

sto metasternum

stl stylo

sin, primer sternite abdominal

sin, segundo sternite abdominal

sin, tercer sternite abdominal

sin, séptimo sternite abdominal

sinz octavo sternite abdominal

st, noveno sternite abdominal

stp stipes

sipl, mesosternopleuron

slu vena trunca (base de la vena transversa sectorial)

sur surstylus

su vena transversa sectorial

le tarso anterior

i, tarso medio

t. tarso posterior

tb, tibia anterior

tb, tibia media

tb, tibia posterior

tent tentorium

tg, primer tergite

tg, segundo tergite

tg, séptimo tergite

t3, octavo tergite

lg, noveno tergite

th, ph phragma protoráccico

U Universidad

ts sutura transversa

(USN M) U.S. National Museum

Uv vertex

ul lamella ventral (décimo segmento)

Vn volcán

W oeste (weste)

w ala

wb base del ala

(WIEN) Naturhistorisches Museum, Viena

INTRODUCCION

“Ch'le, con su largo territorio, separado geográficamente de regiones tro-

picales húmedas y bien definido políticamente por límites naturales, es posi-

blemente uno de los pocos países continentales del mundo, que posee una

fauna propia” (Peña L. E., 1966 p. 1) y su estudio presenta un desafío a los

entomólogos por su clara falta de relaciones con otras faunas mejores estudia-

das.

Este estudio de los asilidos de Chile ha sido ayudado notablemente con

la publicación del trabajo de Hull en 1962; la bibliografía, el estudio de las

taxa genéricas, y la lista de las especies comprendidas en cada género ahorra-

ron gran parte del fatigoso trabajo de empezar sobre material disperso.

Al preparar una revisión de los asilidos de Chile, se ha tenido la suerte

de tener a la mano gran parte del material existente y la mayoría de los

Typos, así también toda la literatura necesaria.

En el presente trabajo se han designado lectotypos a la especie Obelo-

phorus landbecki (Philippi) y Lycomyia germinainú Bigot; se ha designado,

por pérdida del material original, neotypos a las siguientes especies: Alyssomyia

brevicornis (Philippi), Araiopogon fraternus (Bigot), Creolestes rubricornis

(Philippi), Creolestes rufescens (Philipp), Peromyia fuscipennis (Blanchard),

Heximerttia micans (Philippi), Dasycyrton gibbosus Philippi, Dasycyrton tener

(Bigot), Hypenetes punctipenn:s (Philippi), Oberon fulvipes (Philippi), Scyla-

ticus lugens (Philippi), Scylaticus rufipes (Philippi), Scylaticus venustus (Phi-

lippi), Theromyia murina (Phil'ppi) Megametopon occidentale (Philippi),

Myaptex brachyptera (Philippi), Stizolestes eritrichus (Philippi), Stizolestes

nigriventris (Philippi).

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MORFOLOGIA

Las descripciones de los caracteres morfológicos definidos en este capítulo,

corresponden principalmente a las partes del cuerpo que más a menudo pro-

porcionan caracteres de valor sistemático. Los términos usados para definir ca-

da parte, son en su mayoría términos ya usados anteriormente por otros au-

tores, los cuales se han traducido al español. Las siguientes referencias han sido

consultadas en relación con la nomenclatura de la morfología externa de los

asilidos: Bonhang, 1949; Borror £ Delong, 1964; 'Brindle, 1962; Bromley,

1946; Cholodovsky, 1900; Cole, 1927; Cole £ Pritchard, 1964; Crampton,

et al., 1942; Emden £ Henning, 1956; Engel, 1929; Govin, 1949; Hansen, 1883;

Hardy; 1930, 1942. y 1944; Hull, 1962; Janssens, 1959; Karl, 1959; Linsley,

1960; Martin, 1961 y 1962; Melin, 1923; Owsley, 1946; Pennak, 1964; Peter-

son, 1916; Reichard, 1929; Deguy, 1927; Snodgrass, 1902 y 1935; Timon—Da-

vid £ Nicoli, 1955; “Torre Bueno, 1937; Tuxen, 1956; Whitfied, 1925; Zinov

eva, 1960.

El cuerpo de los asilidos (Figs. 173, 203) es alargado, corrientemente del-

gado y muchas veces esbelto, semejante al de los therevidos (Therevidae), de

los cuales pueden separarse por el vertex hundido característico de los asilidos;

algunos asilídos se asemejan a hymenópteros (Mallophora, Andrenosoma, He-

xumeritia, etc.) debido a su cuerpo grueso y velludo; otros asilidos son graci-

les y esbeltos (Deromyia, Graptostylus, Oberon, etc.), y un gran número de

ellos (Asilinae) son característicos por su cuerpo alargado, torax con estrías,

alas grandes y color gris oscuro. La cabeza está conectada al tórax por un

cuello delgado y flexible, que le proporciona gran movilidad, los ojós y el

aparato bucal componen casi toda la cabeza. El tórax corrientemente fuerte y

elevado, destacándose el mesotorax por su gran tamaño; el protorax es pequeño

pero disernible en los ejemplares secos, el metatorax es reducido (Fig. 3).

El abdomen (Figs. 6 y 7) es corrientemente alargado, muchas veces subcilín-

¿drico; las estructuras genitales están ubicadas al término del abdomen e. inclu-

yen en los machos el segmento 9 (epandrium (ep) e-Hypandrium (hy), y

10 (epiprocto (epp) (Figs. 8 y 10); en las hembras el ovipositor incluye los

=39=

segmentos 7 u 8 al 11 (Fig. 12), en algunas especies solamente el segmento

9 está modificado para la oviposición (acantohophorites (act) (Fig. 191).

Las patas son largas y delgadas, en algunas especies el fémur se presenta en-

erosado (Creolestes), las patas corrientemente presentan espinas, pelos y cer-

das. El largo de las patas de los asilidos les permite luchar con sus presas

manteniéndolas a distancia de su cuerpo y evitando ser heridos por el aguijón

(la mayoría de las presas son Hymenoptera Aculeata). Las alas son largas,

hien desarrolladas, con fuertes venas; durante el reposo éstas sor mantenidas

en forma plana sobre el abdomen. El nuevo género Atractocoma, tiene gran

parte del cuerpo cubierto con un característico pelo fusiforme (Fig. 220).

LA CABEZA. En vista frontal (Fig. 209) aparecen a cada lado los ojos, grandes,

corrientemente tan largos como el alto de la cabeza; entre los ojos está la

cara (f) en la parte basal y la frente (fr) en la parte superior, la base de las

antenas separa ambas partes. En el extremo superior de la frente está el

vertex (v) el cual es hundido, y posee en su centro el ocellarium (ocl); el

límite inferior de la cara es el borde oral (ob) (Fig. 1). Para los fines der

criptivos de este trabajo, el alto de la cabeza se muestra con la linea A en

la figura 15, y el ancho de la cabeza con la línea B; el largo relativo de estas

dos medidas es usado en la diagnosis de los géneros. En vista lateral (Fig. 1),

los ojos ocupan la mayor parte de la cabeza; una área angosta, ubicada detrás

de los ojos es el área postocular (poa). El ancho de los ojos (C) y del área

postocular (D) según se muestra en Fig. 14, es usado en forma de propor

ción en las diagnosis de los géneros. En la parte inferior de la cabeza están

ubicados los elementos bucales, los cuales están organizados en una estructura

tubiforme, la proboscis (Fig. 16) (prb). La cara es fácilmente distinguible en

aquellas especies que tienen cara plana, presentan el borde anterior de los ojo:

como el límite anterior de la cabeza (Fig. 70). El área posterior de la cabeza

o área postocular (poa), es usualmente plana, circular, con una clara de-

presión en el centro bordeando el foramen magnum (fmg) que es el orificio

posterior de la cabeza por donde ésta se comunica con el resto del cuerpo a

través del cuello (Fig. 2). Bajo el foramen magnum están localizados los ele-

mentos bucales .En el interior de la cápsula cefálica se encuentra el tento-

rmum (tent) el cual corresponde al esqueleto interno de la cabeza; los brazos

anteriores se conectan a la cápsula cerca de la inserción de las antenas: los

puntos de conección forman unas pequeñas depresiones denominados hendi-

dura tentorial anterior (atp). En la Fig. 1 se muestra también la faringe (ph),

la glándula salival (sgl), y sus conexiones con la hypopharynge (hyph).

Areas de la cabeza (Figs. 1, 2, 209). La cabeza se ha divido en varias áreas

para su descripción. Generalmente no existe un límite definido entre ellas

(e. g. occipucio y áreas postoculares), sin embargo pueden por lo menos re-

conocerse sus partes centrales. Algunas veces el nombre del área se refiere a

E y E

una característica de ella (giba facial es una distención de la cara), o bien

se refierea un grupo de elementos ahí presentes (mystax, barba), o los lu-

gares donde están ubicadas (disco del scutellum).

Cara (f). La cara es el área entre los ojos desde la base de las antenas hasta

el borde oral. Esta área es algunas veces plana (Fig. 70), o proyectada ante-

riormente, formando una distención, esta es la giba facial (fg) (Figs. 1, 87,

297). La vestidura de la cara es el mystax (my), el cual varía desde unos po-

cos pelos ubicados en el borde oral (Fig. 133) hasta una abundante pilosidad

que cubre totalmente la giba facial (Figs. 101, 372); la cara está corriente-

mente cubierta por micropubescencia que produce reflejos dorados, plateados

o sedosos. El límite inferior de la cara es el borde oral (ob). En Fronomopsis

la cara está proyectada en una larga giba facial terminada en punta (Fig. 213).

Frente (fr). Es el área comprendida entre los ojos desde la base de las an-

tenas hasta la base del ocellarium (ocl); algunas veces es algo deprimida, es-

pecialmente cerca del ocellarium, o levemente abultada (Fig. 317), pero sin

extenderse más allá dei límite de los ojos; la frente está usualmente cubier-

ta por fina micropubescencia que proporciona reflejos plateados o grises, en

algunas especies son dorados, en general semejante a la micropubescencia de

la cara; los pelos presentes en la frente son los pelos frontales (frh), los cua-

les están ubicados de preferencia a lo largo de los bordes de los ojos, forman-

do una o varias hileras que pueden extenderse hasta la base misma de las

antenas (Fig. 209); algunas veces existe abundante pelo en el centro de la

frente, en ese caso estos son smejantes a los pelos del ocellarium.

Ocellarium (ocl). El ocellarium es una elevación en la parte superior de la

cabeza que contiene los tres ocelos (oc); varía en forma y tamaño, desde una

suave elevación hasta formar un definido tubérculo que alcanza el límite su-

perior de los ojos (F'g. 64); algunas veces el occellarium se extiende hacia atrás

en forma de un triángulo; en él se encuentran las cerdas ocelares (ocb),

las cuales varían en número, longitud y dirección, (proclinadas, reclinzdas,

divergentes o convergentes). Los ocelos varían en tamaño, pero usualmente

mantienen una misma relación de tamaño con el ocellarium; el color de los

ocelos en especímenes secos varía entre blanquizco y rojizo, y entre café claro

y negro bri.lante. En aigunas especies hay abundantes pelos alrededor de los

ocelos, y en algunos casos éstos son tan largos como las cerdas ocelares (Fig. 63).

Antenas (ant). Las antenas están ubicadas entre la cara y la frente, cerca de

las hendiduras tentoriales anteriores. Su ubicación varía, algunas veces están

ubicadas en el tercio superior de la cabeza, otras veces en el centro. Las an-

tenas varían en conformación y constituyen un excelente carácter taxonómico,

especialmente por su estabilidad entre los especimenes del mismo grupo. El

primer segmento es siempre cilíndrico, el segundo corrientemente es cilíndrico

-pero algunas veces toma aproximadamente la forma de una esfera; el largo re-

lativo de estos segmentos varía; el primero es corrientemente más -largo que

el segundo, o ellos pueden ser de aproximadamente el mismo largo; ambos

segmentos poseen pelos cuyo largo y densidad es variable, pero los pelos del

costado ventral son casi siempre más largos. El tercer segmento presenta ma-

yores variaciones, desde cilíndrico (Fig. 64) hasta piriforme y comprimido

(Fig. 372), o fuertemente pedunculado con una maza en el extremo (Figs.

101, 115); el tercer segmento está a menudo cubierto por micropbescencia y

algunas veces tiene pelos cortos ralos en el lado dorsal (Fig. 159). El tercer

segmento puede presentar una simple espina en su ápice (Fig. 198), un corto

microsegmento con o sin espina terminal (Fig. 253), o dos microsegmentos,

el más distal puede no llevar espina terminal (Figs. 77—86). Cuando el segun-

do microsegmento es largo, puede ser denominado stylo, pero en este trabajo

el nombre de stylo se ha reservado para indicar un segmento cuyo largo sea

por lo menos de la mitad del largo. del tercer segmento, con o sin microseg-

mento intermediario incluido. Un típico stylo de acuerdo a estas consideracio-

nes es el presentado por la subfamilia Asilinae, excepto por el género Lycom-

y1a (Fig. 292).

Proboscis (prb). La proboscis es larga y más o menos tubiforme; puede ser

deprimida como en Andrenosoma (Fig. 189) o comprimida como en Stizoles-

tes (Fis. 355), pero generalmente es más o menos cilíndrica y ahusada en el

ápice; en Hexameritia (Fig. 34) la proboscis es corta y truncada; posee pelos

en la parte ventral, los cuales son usualmente largos, finos y ralos, similares

en color a los pelos de la barba. La proboscis (Figs. 1, 2) está formada por

la hypopharynge (hyph), las lacinias (la), el labrum (ibr), y el labium (mn,

Ibl, y pel); el labium está ubicado ventralmente y los bordes se curvan hacia

arriba encerrando la hypopharynge y las lacinias; la estructura tubular forma-

da por el labio es cerrada basoventralmente por los cardos (cd) y los stipes

(stp), y basodorsalmente por el labrum. La hypopharynge es el elemento pe-

netrante. Los palpos maxilares (mxp) tienen 1 o 2 segmentos, presentan ves-

tidura pilosa, la cual es más abundante y larga en el extremo distal. Los palpos

maxilares son corrientemente subcilíndricos y truncados en el ápice, excepto

en Andrenosoma y Obelophorus en los cuales el segundo segmento es filifor-

me. En especímenes secos, los palpos maxilares están generalmente apegados

a la parte superior de la cavidad oral, en los bordes de la cavidad, esta área

es generalmente pilosa de manera que la observación de la estructura detalla-

da de los palpos se hace muy dificultosa. Por esta razón, el estudio de la

estructura de los palpos ha sido omitida en este trabajo y no se les ha usado

como elemento taxonómico en las diagnosis; en varios casos, hasta en especí-

menes aclarados, ha sido imposible determinar si el palpo tiene 1 o 2 segmen-

tos, ésto se debe a que la base del palpo se hace progresivamente membrano-

sa y no se distinguen articulaciones. Lamentablemente este carácter ha sido

muy usado por autores anteriores, no dejamos aquí de reconocer su valor ta-

xonómico en algunos grupos.

Cavidad oral (ocv). Esta es una cavidad cerrada, formada por la porción fle-

xible de la parte baja de la cara, la cual se retrae cuando la proboscis es

plegada hacia arriba; el límite entre la porción flexible y la parte dura, for-

man el borde de la cavidad o borde oral.

Barba (b). La barba consiste en los pelos ubicados en la parte baja del área

postocular, el borde inferior de los ojos, y los stipes; estos pelos aparecen for-

mando un solo grupo y son generalmente de un solo color. La barba varía

en densidad, largo y color.

Área postocular (poa). Es el área detrás de los ojos que rodea el foramen

magnum (fmg), está corrientemente cubierta por micropubescencia y pelos

de distintos largos, pero corrientemente son más largos en la parte basal. La

parte posterior, detrás del vertex es el occipucio, y las cerdas ubicadas en esa

área son las cerdas occipitales (occb); estas cerdas están ordenadas en grupos

a cada lado del vertex o forman hileras a lo largo de los bordes posteriores

de los ojos, en este caso son denominadas cerdas postoculares (pob); algunas

veres las cerdas postoculares y las occipitales forman una fila continua de

manera que es imposible separarlas, a no ser que posean un largo diferente

o varían en coloración. En Stizolestes las cerdas occipitales no existen o es ca-

si imposible distinguirlas de los pelos existentes en el área. En muchas especies

existe una línea, de ancho variable, de micropubescencia blanquisca a lo largo

del borde de los ojos; esta línea es más visible en especímenes oscuros.

EL TORAX. El tórax está formado por un pequeño protorax, un gran meso-

torax y un reducido metatorax (Figs. 3, 4, 5).

Protorax. El borde anterior es el collar (cll), el cual corrientemente lleva

una fila de cerdas, las cerdas del collar (cllb); el pronotum (n,) se divide en

una parte anterior y una posterior, la anterior se extiende lateralmente y su

borde anterior se proyecta hacia adelante en forma de un lóbulo, el lóbulo

protoráccico (pthl), donde a menudo la pilosidad es más densa que en el

área dorsal y a veces es de distinto color, la parte posterior del pronotum está

casi dividida por el mesonotum, corrientemente presenta una hendidura en

el centro. El propleuron (p!,) es pequeño. Inmediatamente detrás del pronotum

está el espiráculo protoráccico (sp,). Entre las coxas anteriores (cx,) está ubi-

cado el prosternmum (st,) el cual puede o no estar adherido al propleurón;

este caracter ha sido usado por Hull (1962, text—figure 1) para separar gé-

neros, pero no ha sido usado en este trabajo por las dificultades que presen

ta para ser diangosticado con segurida- en ejemplares secos, especialmente

debido a la abundante pilosidad que viste el área.

aL 0

1.— Cratopoda helix (después de aclarado), cabeza en vista lateral; ojos -retira-

dos; no se muestran pelos ni cerdas.

2 — Cratopoda helix (después de aclarado), cabeza en vista posterior; no se

muestran pelos ni cerdas.

3.— Cratopoda helix (después de aclarado), tórax en vista lateral; no se mues-

tran pelos ni cerdas.

ant antena

atp hendidura tentorial anterior

D barba

bal esclerite basalar

cd cardo

cll collar

cllb cerdas del collar

EN coxa anterior

cx, Coxa media

cx, coxa posterior

dcb cerdas dorsocentrales

epm, mesepimerón

emp, metepimerón

eps, mesepisternum

f cara

f2 ceiba facial

1 frente

fmg foramen magnum

el elossa

ha halter

he callo humeral

hpl. hypopleurón

hyph hypopharynge

tab cerdas intraalares

la lacinia

1b1 labella

lbr labrum

mn mentum

mxp palpo maxilar

n, pronotum

n, mesonotum

n metanotum

notopleuron

cerdas notopleurales

borde oral

cerdas occipitales

ocellarium

cavidad oral

cerdas postalares

callo posterior

paraglossa

pharynge

propleurón

mesopleurón

área postocular

cerdas postoculares

postcutellum

lóbulo protoráccico

pteroropluron

cerdas scutelares

mesoscutellum (scutellum)

elándula salivar

costados del postmesonotum

celda submarginal

espiráculo protoráccico

espiráculo mesotoráccicos

stipes

mesosternopleuron

tentorium

primer tergite

sutura transversa

vertex

base del ala

4.— Cratopoda helix, tórax en vista dorsal.

5.— Cratopoda helix, tórax (después de aclarado), en vista ventral; no se

muestran pelos.

ce líneas centrales del mesonotum

ellb cerdas del collar

EXE. cavidad coxal anterior

EC cavidad coxal media

EXC cavidad coxal posterior

dcb cerdas dorsocentrales

dsclb cerdas discoscutellares

epm, mesepimerón

epm, metepimerón

eps, mesepisternum

eps, metepisternum

hc callo humeral

hpl hypopleurón

1b cerdas intaalares

me merón

1% pronotum

N, mesonotuln

npl notopleurón

nplb cerdas notopleurales

pb cerdas posteriores

pc callo posterior

pl, propleurón

posls mancha lateral postsutural

pris mancha lateral presutural

scb cerdas scutelares

sel, mesoscuíellum (scutellum)

sin, primer sternite abdominal

sin, tercer sternite abdominal

stpl, sternopleurón del mesotorax

th ph phragma protoráccico

ls sutura transversa

-Npl

osis

Mesotorax. Este segmento ocupa la mayor parte del tórax; el mesonotum (n, y

las pleuras toráccicas están claramente separadas en sclerites. El mesonotum

(Fig. 4) está dividido por la sutura transversa (ts), la cual se interrumpe en

la parte dorsal, esta sutura divide el mesonotum en una área presutural y un

área postsutural; hacia atrás del área postsutural se encuentra el mesoscute-

llum (scl,). En cada esquina del borde anterior del mesonotum están los

callos humerales (hc), y en el borde posterior los callos posteriores (pc).

En general el mesonotum presenta claras marcas, las cuales se deben a la

presencia de micropubescencia o a la coloración propia del dermoesqueleto;

estas son las líneas centrales del mesonotum (ce), dos líneas paralelas que a

veces se juntan para formar una ancha banda, y las manchas laterales, las

cuales de acuerdo con su posición en relación con la sutura transversa se han

denominado manchas presuturales (prls) y manchas postsuturales (posls);

estas manchas a veces se juntan formando en cada lado una corta y gruesa

banda, con lo que el mesotorax aparece con cuatro bandas. Las líneas centra:

les y las manchas laterales tienen corrientemente un color distinto al del me-

sonotum, otras veces tienen sólo un tono más oscuro que del mesonotum.

La cubierta del mesonotum varía desde unos pocos pelos aprensados (Oberon)

hasta abundante pilosidad, algunas veces más largo y más denso a lo largo

de la línea media (Stizolestes). Las cerdas localizadas a lo largo de la línea

central son las cerdas dorsocentrales (dcb), y las ubicadas en los bordes late-

rales antes de la sutura transversa son las cerdas notopleurales (mplb); las

ubicadas antes de la sutura transversa son las cerdas notopleurales (nplb); las

ubicadas en los callos posteriores (pc) son las cerdas posteriores (pb).

Las cerdas en el centro del disco del mesoscutellum son las cerdas discoscute-

lares (dsclb), las cuales a menudo están ausentes, y las ubicadas en el borde

posterior son las cerdas scutelares (scb). Las cerdas scutelares varían desde au-

sentes (Oberon) hasta 10 o más en cada lado (10 pares). El mesopleuron

(Fig. 3) está claramente dividido en: mesopleuron (pl,), sternopleuron

(stpl,), pteropleuron (ptpl), hypopleuron (hpl), mesepimeron (emp.) y

mesepisternum (eps.); el espiráculo mesotoráccico (sp.) está ubicado entre

el mesepimeron y el mesepisternum; la base del ala, incluyendo los escierites

basalares (bal) y subalares (sal), está localizada sobre el pteropleuron. En

Mallophora (fig. 300) el esclerite subalar tiene un notorio proceso tuberculi-

forme que es cacaracterístico de ese género. Las cerdas mesepimerales siempre

están presentes y su color varía del blanco al negro, también varía la den-

sidad y número de ellas, otras veces están mezcladas con pelos, especialmente

en especies pilosas; los esclerites restantes rara vez tienen abundante pilosidad,

excepto en Obelophorus, Mallophora y Eccritosia. El área bajo el mesoscute-

llum y la que se extiende hacia la base de las alas es el postmesonotum

(slpn,), y la presencia o ausencia de pelo en esa área proporciona un útil

E pa

carácter taxonómico. El postscutellum (pscl) es muy pequeño. El sternum

(Fig. 5) no ha sido usado como caracter taxonómico debido a que, como las

coxas están muy cerca unas de otras, hacen su observación muy difícil en

ejemplares secos.

Metatorax. Este segmento está muy reducido en los asilidos; sólo el metepime-

ron (epm,) y el metasternum (st,) son distinguibles. El metasternum y el

primer sternite (stn,) han sido denominados metasternum ventral (Hull,

1962: 10—11); pueden ser totalmente membranosos, debilmente eclerotizados

o formar un arco duro, fuertemente quitinizado.

EL ABDOMEN. El abdomen está claramente dividido en 10 segmentos; los

primeros 8 no están corrientemente modif'cados; el segundo segmento es más

largo que los 4 siguientes. El primer tergite (tg,) es a veces debilmente mem-

branoso en la línea media (Pronomops:s fig. 215, Neosiotes Fig. 345); esta

condición ha sido denominada como dividido, opuesto a completo cuando el

tergite está uniformemente esclerotizado. Los bordes laterales de los tergites

siempre montan sobre los bordes laterales de los sternites; en especímenes se-

cos los sternites pueden mantener su forma natural, curvados hacia abajo, pe-

ro algunas veces éstos se curvan hacia arriba en la misma forma que los

tergites; ésto sucede a menudo en géneros como Hexamerit:a, Deromyia, Da-

sypecus, etc. El primer sternite es angosto (Fig. 7) y en especímenes secos a

menudo parece pertenecer al tórax. El último sternite en los machos puede

ser grande, con notables extensiones y lóbulos, además de abundante pilosidad

(Fig. 261, 263, 363, 367), aparentando formar parte de la genitalia. Los seg-

mentos 9 y 10 forman el aparato genital (genitalia). La cubierta o vestidura

pilosa del abdomen varía desde unos pocos pelos aprensados —el abdomen

aparece como glabroso (Scylaticus, Deromya, Pronomopsis)— hasta una pilosi-

dad densa y erecta (Mallophora, Obelophorus). Los pelos de los sternites

son siempre más largos que los de los tergites.

GENITALIA DEL MACHO (Figs. 8, 9, 10). La genitalia del macho está forma-

da por el tergite 9 o epandrium (ep), el sternite 9 o hypandrium (hy), el gono-

podo (g), y el epiprocto (epp). El epandrium está corrientemente ubicado dor-

salmente; en genitalias rotadas (450—1800) está ubicado en el costado o ven-

tralmente, con las hypandria en el lado opuesto. El epandrium puede estar

formado por una o dos piezas; cuando está formado por dos piezas, se le

denomina corrientemente epandria o forceps superiores, en este trabajo el

epandrium se denominará en forma de forceps cuando está compuesto de dos

piezas y ellas se opongan una a la otra como los brazos de una tenaza (Fig.

246, 275). En Saropogon (Fig. 181), el epandrium no está dividido, pero

presenta un profundo recorte triangular en el borde posterior; en algunos

= 240)

6.— Cratopoda helix, abdomen en vista lateral.

7.— Cratopoda helix, metasternum y sternites 1 y 2 en vista ventral

8.— Cratopoda helix, epiprocto en vista ventral, luego de remover los gono-

podos y el hypandrium.

9.— Cratopoda helix, gonopodo en vista lateral - interior.

10.— Cratopoda helix, genitalia Y en vista lateral, luego de remover los epan-

dria.

11.— Cratopoda helix, ovipositor (luego de aclarado), en vista lateral y exten-

dido.

12. —Cratopoda helix, ovipositor (luego de aclarado). en vista ventral y ex-

tendido.

a anus

bas basistylus

C cercus

ESC cavidad coxal posterior

dist dististylus

ep epandrium (tg,)

epp epiprocto

epm, metepimerón

gp gonopodo

hyp hypandrium (stn,)

mb membrana

psh funda del pene

sap placa subanal

sis metasternum

sin, primer sternite abdominal

AAA segundo sternite abdominal

sin, tercer sternite abdominal

sin, séptimo sternite abdominal

sim, octavo sternite abdominal

sin, noveno sternite abdominal

tg, primer tergite

ta, segundo tergite

ta, séptimo tergite

tg, octavo tergite

lg, noveno tergite

vl lamella ventral (segmento décimo)

géneros como en Andrenosoma (Fig. 197), Araiopogon (Fig. 171), etc. las lo3

piezas del epandrium están ubicadas dorsalmente y no forman un torceps.

El hypandrium es corrientemente más pequeño cuando está ubicado en el la-

do ventral; en genitalias rotadas, el hypandrium es semejante en tamaño al

epandrium (ventral) como se muestra en la Fig. 106, rara vez este es nota-

blemente más grande (Fig. 155) o más pequeño (Figs. 146, 147); cuando el

hypandrium está ubicado dorsalmente, usualmente cierra por lo menos la

parte basal de la cavidad genital, a menudo el borde distal es recortado

(hendido) (Figs. 190, 192), con espinas (Figs. 110, 114), o con un proceso

puntudo (Fig. 93). Cuando el hypandrium está ubicado ventralmente es a

veces diminuto y está oculto por el sternite 8 (Fig. 201), o fusionado a la

base de los, gonopodos ¡((Fig.. 20). En Pronomopsis (Fig. 216) y Deromyia

(Mes. 175, 179) el hypandrium y el epandrium están fusionados, formando

un anillo. Los gonopodos están siempre ubicados a ambos costados de la geni-

talia, entre el epandrium y el hypandrium, adosados al sternite 9 (Hypan-

drium); éstos son usualmente globosos en su base, a menudo puntudos distal-

mente (Figs. 45, 103, 106). La base de los gonopodos es el basistylus (bas);

los elementos alargados ubicados apicalmente son los dististyli (dististylus

(dist) claspers según Hull, 1962: 13) (Figs. 9, 10, 374) e interiormente los

surstyli (sur) (Fig. 134, 135); estos elementos son usados para dirigir el aedea-

gus y para sujetar a la hembra durante la cópula. Alrededor del ano (ano)

y rodeado por el epandrium, los gonopodos y las hypandria está el epiproc-

to (epp) (Fig. 8, 10) el cual corresponde a los segmentos 10 y 11; el epi-

procto es corrientemente membranoso, con dos cercos (c); estos cercos no son

cercos verdaderos (segmentos 11), el nombre se ha tomado de otros autores,

posiblemente correspondan al tergite 10; y una placa ventral, la placa subanal

(sap) (posiblemente el sternite 10); algumas veces se presenta una pequeña

placa esclerotizada entre los cercos y la placa subanal, la lamella ventral (vl)

la cual podría corresponder al segmento 11.

Funda del pene (psh). Esta es una estructura fuertemente esclerotizada que

envuelve el aedeagus; está adosada a los gonopodos por dos extensiones la”

terales. La forma de la funda del aedaeagus varía mucho, desde una forma

simple y compacta (Fig. 277) hasta una pequeña base con largos procesos

terminales en forma de látigo (Fig. 315, 326); en el extremo distal de la fun-

da hay un orificio, el poro eyaculador (ejp), desde el cual el fluido seminal

es expulsado al exterior; el poro eyaculador se comunica con aedeagus por

medio, del ducto eyaculador (ejd) (Fig. 91); en-la base del aedeagus está: el

apodema eyaculador (ejap), una placa plana, fuertemente escleritizada, pro-

vista de un pedúnculo basal (Fig. 46); el aedeagus y el apodema eyaculador

(en parte) se indican en líneas punteadas en 105 dibujos de las fundas del

= 32 =

aedeagus. La forma de la funda del aedeagus ha desmostrado tener un gran

valor taxonómico, especialmente a nivel específico. Una vista lateral de esta

funda se presenta para casi todas las especies estudiadas.

OVIPOSITOR (Figs. 11, 12). El ovipositor está formado por el extremo del

abdomen de las hembras, y corrientemente incluye los segmentos 8 y 9. En la

subfamilia Asilinae el ovipositor es cónico (Figs. 265, 273) o en forma de una

lámina (Figs. 268, 270); cuando es cónico, está formado por el segmento 9 y

los cercos, en cuyo caso el tergite 9 se proyecta lateroposteriormente bajo los

cercos (Figs. 270, 272); en otras especies, el ovipositor es trunco en su extre-

mo (Fig. 60) o ligeramente cónico (Fig. 22), algunas veces, en algunos Dasy-

pogoninae, está armado de 6-12 espinas en cada acanthophorite (act) (Fig.

123). Los acanthophorites son parte del segmento 9; en.algunos casos los cer-

cos presentan pequeñas espinas en su borde ventral (Eccritosia, Fig 313,

Creolestes wirthi n. sp. Figs. 230 y 231). En Hexameritiía el ovipositor es te-

lescopeado (Figs. 40 y 41), y en Obelophorus forma un cilindro notablemente

más angosto que los segmentos abdominales precedentes (Fig. 33).

PATAS. Las patas son largas con una coxa grande, corrientemente poseen pilo-

sidad corta y cerdas más largas; la pilosidad de las coxas es generalmente más

densa en el costado anterior de la coxa anterior; en general varía entre

corta y rala, aprensada y abundante, larga y erecta, algunas veces formando

mechones característicos (Stizolestes modellus); los fémures y tibias tienen pe-

los, cerdas y espinas; algunas especies de Dasypogoninae y todas las de Mega-

podinae tienen espina en la tibia anterior (ftbs) (Fig. 140), es una larga

espina sigmoidea que se extiende desde su base en el ápice de la tibia hasta la

mitad del primer segmento tarsal. En Prolepsis hay abundantes espinas en el

lado ventral de los fémures medios (Fig. 142); en los machos de Theromyia

murina hay gruesas cerdas espiniformes en las tibias posteriores (Fig. 186),

característica que distingue a la especie. Las cerdas son comúnmente abundan-

tes en las patas, y constituyen un carácter taxonómico muy usado en las diag-

nosis (Fig. 56, 58). Los segmentos tarsales rara vez se usan en diagnosis de-

bido a su poca variación tanto en forma como en vestidura; los segmentos

son corrientemente cilíndricos (Fig. 71), en el género Dasycycton sin embargo,

éstos son sub—esféricos (Fig. 75). Las uñas presentan pocas variaciones; en

Leptochelina n. g. (Fig. 131) y en Theromyia (Fig. 186) estas son largas y

suavemente curvadas y los pulvilli (pul) están reducidos a un cuarto del

largo total de las uñas o menos. En Mallophora las uñas son típicamente ro-

mas (Fig. 299). Uñas y pulvilli como se presentan más corrientemente se ilus-

tran en la Fig. 62.

ALAS. El color de la membrana varía desde café oscuro intenso (Deromyia

fuscipennis, G) hasta hyalina (Oberon fulvipes); algunas especies tienen la

alas parcialmente ahumadas (fumosas), o con áreas cafés, amarillentas o ana-

13.— Cratolestes chiliensis, venación alar rotulada de acuerdo con la termino-

logía de Comstock—Needham, excepto por algunas celdas (ver abajo).

14.— Vista lateral de la cabeza mostrando: alto de la cabeza, A; ancho del ojo,

C; área postocular, D.

15.— Vista anterior de la cabeza mostrando: ancho de la cabeza, B; alto de la

cabeza, A.

16.— Pritchardia hirtípes, cabeza en vista lateral.

17.—Pritchardia hirtipes, genitalia Y en vista lateral.

A celda anal (14)

Cal calypter

ep epandrium

gp gonopodo

MC celda marginal (R,)

E celda posterior (R;,, M,, 2? M,, M,, Cu,)

pol lóbulo posterior

prb proboscis

SM celda submarginal (R,. R.)

pad e

Y] j |) AM IVIVE W NI -

TbL. ANMINIANIS a A

y el <a | ' IN 0.3mm 0.5 mm | A

ranjadas (Scylaticus venustus, Prolepsis quadrinotata); en algunas especies con

alas oscuras, las alas presentan reflejos azulados como sucede entre otros en

Aratopogon gayi. Las venas varían entre café y negro. La venación alar (Fig.

13) proporciona excelentes caracteres sistemáticos a nivel genérico, las varia-

ciones entre las especies de un mismo género son insignificantes. En este tra-

bajo se ha usado la terminología venacional de Comstock—Needham, excepto

para algunas celdas donde se ha mantenido la termino!ogía antigua (Fig. 13).

En Dasypecus (Fig. 66), M,, M, + Cu,, y Cu, + 2A se interrrumpen antes de

alcanzar el borde del ala, lo que permite distinguir inmediatamente este géne-

ro de entre los demás géneros existentes en Chile. Las variaciones venaciona-

les más útiles para la taxonomía de los asilidos son: celda marginal (MC)

abierta (Fig. 69) o cerrada (Fig. 13), cuando está cerrada lejos del borde del

ala, R 1+2+3 forman un pedúnculo y la celda ha sido descrita como peduncu-

lada; R, puede alcanzar el borde del ala antes (anterior) del ápice (Fig.

13) o en el ápice mismo (Fig. 394); R. puede alcanzar el borde del ala an-

tes del ápice (Fig. 15) o detrás (posterior) del ápice (Fig. 118); la posición

de R, forma una primera celda posterior (lst P) angosta (Fig. 118) o am-

pliamente abierta (Fig. 13); M, y m pueden formar un ángulo de 909 (Figs.

13, 154, 174) hasta 1800 (Fig. 18); la cuarta celda posterior (4th P) puede

ser abierca (Fig. 76), cerrada al borde del ala, o cerrada lejos del borde del

ala con un pedúnculo (Fig. 13), dependiendo si M, termina en el borde del

ala o se junta con Cu, antes del borde; la celda anal (Al) puede estar lige-

ramente abierta (Fig. 196), cerrada al borde del ala (Fig. 183), o cerrada y

pedunculada (Fig. 13); R, puede presentarse angulada en la base, con o sin

una vena trunca (stv). La vena trunca es la base de la vena sectorial cuando

ésta no está completa, divide la primera celda submarginal (lst SM) en dos

celdas; el ala entonces parece tener 3 celdas submarginales (Mallaphora, Fig.

298); 2-4 venas transversas extra pueden estar presentes cerca del ápice de

la celda subcostal (SC), como sucede en Prolepsis (Fig. 145); el área costal

puede estar extendida o expandida y la membrana especialmente en las celdas

costales, y submarginales puede presentarse arrugada, este es un caracter sexual

de los machos en Lochomorhynchus (Fig. 267), Nomomyia n. g. Figs. 361 y

362) y Philonerax (Fig. 370). Una ilustración de la venación de cada uno de

los géneros tratados se presenta en las láminas correspondientes.

AO PE

BIOLOGIA DE LOS ASILIDOS CHILENOS

No existe información acerca de la biología de los asilidos chilenos; sin

embargo, algunas observaciones relacionadas con las presas ha sido incluidas

dentro del tratamiento de algunas especies. La ontogenia de las especies es

desconocida. Al aclarar algunos ejemplares para efectuar estudios de genitalias

femeninas, se encontraron huevos en el interior de los abdómenes; el número

de huevos ha sido anotado en el tratamiento de las especies, pero como estos

huevos fueron encontrados dentro del abdomen, las fechas de colecta de los

ejemplares no dan necesariamente la fecha de oviposición; un huevo de

Pritchardia hirtipes (Macquart) es ilustrado en la Fig. 23.

Algunas larvas de asilidos chilenos están depositadas en la colección de

la Universidad de Concepción, Chile, pero ninguna de ellas están identifica-

das. Cuatro puparios de Eccritosia rubriventris (Macquart) fueron colectados

junto con 28 Z y 3 2 al tiempo que emergían; los puparios se encontraron

aproximadamente a 10 cm de profundidad en suelo arenoso, en un lugar pró-

ximo a la orilla del mar. Estos ejemplares fueron colectados por el Sr. Raúl

Orellana M. en Arauco, Enero 15, 1961. Un pupario es ilustrado en la Fig.

252.

MATERIAL ESTUDIADO

La mayoría de los ejemplares de asilidos chilenos colectados en los últi-

mos 150 años fueron estudiados en este trabajo. Un total de 3,379 ejemplares

(1,632 SJ, 1,736 9, y 11 sin genitalia) han sido facilitados por los siguientes

museos y colecciones: American Museum of Natural History, New York

(AMNH); British Museum of Natural History, Londres (BRIT); California

Academy of Science, San Francisco (CAS); Centro de Estudos Entomológi-

cos, Universidad de Chile, Santiago (CEE); Department of Entomology, Cor-

nell University, Ithaca (CORN); Departamento de Zoología, Secretaria de

Agricultura, Sao Paulo, Brasil (BRAS); Department of Zoology and Entomolo-

gy, Ohio State University, Columbus (OSU); Departamento de Zoología, Uni-

versidad de Concepción, Concepción (INCO); Entomology Research Institute,

Ottawa (OTI); Hope Department of Entomology, Oxford University (OXF);

Michigan State University, Department of Entomology, East Lansing (MICH);

Ministerio de Agricultura, Santiago (MA); Museo Nacional de Historia Na-

tural, Santiago (MNHN); Museum National d'Histoire Naturelle, Paris

(PAR); Naturhistorisches Museum, Viena (WIEN); Museum of Comparative

Zoology, Harvard University, Cambridge (MCZ); Colección L.E. Peña, Santia-

go (LEP); U.S. National Museum, Washington, D. C. (USNM); Zoologisches

Museum, Humboldt Universitat, Berlin (BERL); Zoolog'sche Saamlung des

Bayerischen Staates, Munchen (MUNCH).

— EN =

Las iniciales en paréntesis colocadas a continuación de cada institución,

son usadas para identificarlas en el material estudiado.

Estas instituciones y personas han facilitado todo cl material chileno que

poseen, excepto el Museum Nacional d'H'stoire Naturelle y el British Museum,

los cuales han retenido el material typo; sin embargo enviaron material com-

parado en la mayoría de los casos.

Dos colecciones importantes de asilidos chilenos no han sido estudiadas:

una es la del Colegio San Pedro Nolasco, Santiago, que contiene la mayor

parte del material colectado por Flaminio Ruiz, y el material colectado por

el Dr. Evert I. Schlinger de la Universidad de California, Riverside (Enero,

1966 a Febrero, 1967), este material está por el momento siendo montado y

etiquetado para su estudio.

Los museos anotados anteriormente incluyen las colecciones privadas de

A. E. Pritchard (USNM), E. E. Reed (CAS), Kaiser (BRAS, Ross éc Michel-

backer (CAS), P. Herbst (CAS), S. W. Bromley (USNM), E. G. Crampton

(USNM), R. A. Philippi (MNHN), J.T. Medina (MNHN), y L. E. Peña

(INCO).

METODOS

TRATAMIENTO SISTEMATICO.

En los tratamientos de los géneros y especies, se ha seguido un orden

constante. Los géneros han sido ordenados alfabéticamente dentro de cada sub-

familia, y las especies ordenadas alfabéticamente dentro de cada género. La

distribución de cada género se ha indicado por medio de zonas zoogeográficas

cuando éste incluye áreas fuera de Chile; cuando el rango de distribución es

exclusivo para Chile, se expresa como “Neotropical (Chile)”. El número total

de especies existentes en cada género es tomado de Hull (1962), el número de

especies chilenas están indicadas al final. Las claves de especies incluyen sola-

mente las especies chilenas, excepto en Pronomopsis y Theromyia, donde al-

gunas especies no chilenas se han agregado para presentar una clave de todas

las especies del género.

Todos los datos disponibles sobre los ejemplares typo, incluyendo su ac-

tual ubicación, se han agregado a este trabajo; cuando los typos han sido es-

tudiados personalmente por el autor, éstos se ha indicado como “typo visto”.

En algunos casos en que no había sido designado el typo, se aprovechó para

designar un Lectotypo de entre el material original disponible; cuando el ma-

terial original se ha perdido, se ha designado un Neotypo. En relación con

las nuevas especies descritas en este trabajo, todo el material, excepto el typo,

es considerado material paratípico.

LIB

Todas las medidas han sido presentadas en milímetros; las medidas del

typo se han presentado entre braquetas. Cuando se han usado las medidas da-

das por la descripción original en el caso de typos no vistos, ésto se ha indi-

cado expresamente al final del párrafo.

En las listas de material examinado, la etiqueta del ejemplar ha sido re-

producida sin modificaciones, con el objeto de permitir su individualización;

el lugar en que cada ejemplar está depositado se ha indicado con una abre-

viación en paréntesis, la lista de abreviaciones se da en las págs. 10 a 15. Los

ejemplares que han perdido el ápice del abdomen y por lo tanto no pue-

den separarse por sexos, han sido indicados como “(gen. miss)”. Las genita-

lias separadas de los especímenes y aciaradas en KOH, han sido conservadas

en pequeños frascos “genitalia”, los cuales se han clavado en el alfiler del

mismo insecto; estos especímenes se han indicado como “(gen. prep)”. Las

localidades han sido ordenadas alfabéticamente por provincias (de Chile);

especímenes provenientes de otros países han sido anotados al final de cada

lista, con el nombre del país en itálicas. Bajo el título de “Localidad Incier-

ta”, se han agrupado aquellos especímenes cuya etiqueta señala un nombre

que no aparece en la Gazetteer N9 6, Chile (second ed., 1967), o que indi-

ca un nombre que en la misma publicación aparece representado en dos o

más provincias (cuando la provincia no está indicada en la etiqueta). Los

especímenes anotados bajo el título de “Sin Localidad o Fecha”, son de Chi-

le, sin otra indicación referente a lugar de colecta o fecha.

La distribución de cada especie se muestra en las Figs. 408—504, y la ubi-

cación de las distintas provincias se muestra en la Fig. 414.

METODOS TECNICOS.

Estudio de la Genitalia. La estructura de la genitalia Z y el ovipositor,

es de gran valor en la taxonomía del grupo. Estas estructuras deben ser acla-

radas para hacer un estudio detallado; después de aclararlas, algunos pelos y

cerdas suelen perderse, pero el tamaño y la forma de los elementos genitales

pueden ser observado adecuadamente.

Las genitalias de los machos fueron separadas de los abdómenes entre los

segmentos 7 y 8, porque en algunas especies (Myaptex) parte de la funda

del pene se encuentra retractada algunas veces hasta en el segmento 8. Las

genitalias fueron hervidas de 20 minutos a 2 horas en una solución de KOH

al 25%, o dejadas en la misma solución en frío (temperatura ambiental) por

24 a 36 horas. Cada genitalia fue tratada separadamente en un vaso de preci-

pitado de 10 ml; después de aclarada, se lavó por 5 minutos en una solución

de 1%, de ácido acético para neutralizar, luego se enjuagó en agua destilada

por 15 minutos. Las observaciones e ilustraciones fueron hechas con las geni-

talias sumergidas en glicerina. La disección de la funda del pene fue hecha

= 540) —

en todos los casos bajo glicerina, se les separó de los gonopodos cortando las

uniones laterales; en algunos casos la funda del pene fue extraída desde el

lado abierto del segmento 8. “Todas las genitalias usadas tanto de machos como

de hembras, fueron depositadas en frascos de genitalia (vial, K. £ L. 10 x 5,

N0 82530—01), con no más glicerina que la que cada genitalia retuvo después

de estar 1/ minuto sobre papel filtro. Los frascos de genitalia fueron cerra-

dos con corchos 3/16, los cuales fueron clavados en el alfiler del insecto. Los

ovopositores en general no fueron desarmados, sino guardados completos en los

frascos genitalia.

Dibujos. Las ilustraciones de ¡las Figs. 1-403 se hicieron con la ayuda

de un objetivo reticulado.

BIOGEOGRAFIA DE CHILE

Chile constituye un área zoogeográfica claramente delimitada por barreras

geográficas. Los límites políticos son coincidentes en su mayor parte con estas

barreras que corrientemente constituyen límites ecológicos. Chile limita al nor-

te con el desierto de Atacama, que es considerado el lugar más seco del mun-

do, por el sur con el Continente Antártico, al este por las cumbres de los

Andes Cordilleranos y al oeste con el Océano Pacífico. Estas barreras aislan

el país y han facilitado la formación de una flora y una fauna típica chilena,

ésta es algunas veces más diferente de las floras y faumas existentes en los

países limítrofes que las existentes en Nueva Zelandia, “Tasmania y Australia.

Chile es uno de los pocos países continentales del mundo que posee una fauna

propia. En la parte norte del país existen áreas bordeando Perú y Bolivia

(en conjunto denominada Altiplano) donde no existen barreras, por lo tanto

muchos elementos faunísticos y f.orísticios de esas áreas son comunes para los

tres países. En el sur, donde las provincias chilenas de Malleco, Aysen y Ma-

gallanes (Fig. 414) bordean los territorios Argentinos de Neuquén, Río Ne-

gro y Chubut, (la estepa patagónica y forestas de Notophagus y Araucaria)

también hay comunidad de elementos florísticos y faunísticos. También varias

especies de plantas y animales que habitan las altas cumbres de los Andes

son comunes para Chile y Argentina.

Estudios intensivos de algunos grupos animales como aves, reptiles, am-

phibios, mamíferos y algunos grupos de insectos como Curculionidae, Tachi-

nidae, Bombyliidae, Scarabeidae, Tipulidae, Tenebrionidae, etc. han demostra-

do que más géneros y especies son endémicos de Chile que comunes a Chile

y otros países. Esto ha sido también comprobado en el presente estudio.

Peña (1966) en un estudio sobre los Tenebrionidae Chilenos, propuso

una clasificación para las “Regiones Entomofaunísticas de Chile”. El divide el

país en 18 regiones, dando una descripción de la topografía, flora dominante,

y condiciones climáticas de cada una; como resultado obtiene un útil cuadro

del habitat descrito. Se ha encontrado durante la ejecución de este trabajo

que las regiones propuestas por Peña son de utilidad en el estudio de la dis-

tribución de los asilidos, y ésto ha sido considerado durante la confección de

los mapas de distribución (Figs. 408 a 504).

La primera recolección de asilidos chilenos fueron hechas hace aproxima-

damente 120 años y algo de este material se encuentra aún en buen estado

y ha sido usado en este trabajo. En los primeros tiempos de colecta, ésta se

efectuó principalmente cerca de las ciudades del valle Central, Santiago, Con-

cepción, y a lo largo del camino que une estas dos ciudades. Schonemann, R.

A. Philippi, P. Herbst, E. C, Reed, E. P. Reed, F. Ruiz, fueron los colecto-

res de asilidos más importantes entre los años 1840 y 1920, el material por

ellos colectado está aún en buen estado en algunas colecciones de Chile, Ale-

mania y Francia. Posteriormente el número de colectores aumentó y nuevas

regiones fueron visitadas. Algunos colectores como E. C. Shannon, F. W.

Edwards, Ross £ Michelbacker, etc. y numerosas expediciones efectuadas por

la Universidad de Chile, el Ministerio de Agricultura de Chile, la Escuela

Agrícola El Vergel en Angol (Chile), han colectado material de otros luga-

res además del Valle Central, alcanzando los extremos sur (Patagonia y Tierra

del Fuego) y las altas planicies de los Andes nortinos (Altiplano). D. S.

Bullock, de El Vergel, ha colectado durante los últimos 50 años gran canti-

dad de asilidos principalmente en Angol y en la Cordillera de Nahuelbuta.

Desde 1945, L. E. Peña ha sido el colector más activo de insectos en el país,

el material por él colectado se encuentra depositado en Chile, Brasil, Canadá,

Estados Unidos, etc. En este estudio, casi un tercio del material estudiado ha

sido colectado por L. E. Peña y él representa la mayor parte de las regiones

chilenas propuestas en su trabajo de 1966.

Una gran colección de asilidos chilenos fue reunida entre Enero de 1966

y Febrero de 1967 por el Dr. I. Schlinger (U. of California, Riverside); este

material según comunicación del Dr. Schlinger está en el proceso de ser mon-

tado y etiquetado, por lo tanto no se ha considerado en este trabajo.

DISTRIBUCION DE LAS ESPECIES PRESENTES EN CHILE

De los 40 géneros y 102 especies reconocidas para Chile, 27 géneros y 72

especies son exclusivos para Chile. De los 13 géneros restantes, 7 son Neotro-

picales con un total de 131 especies (112 especies de Mallophora), de éstas,

13 son comunes para Chile y otros países: Chile y Argentina, 10 especies;

Chile y Perú, 1 especie; Chile, Perú, Brasil, y posiblemente otros países 1 es-

= ón —

pecie (M. freycineti, Fig. 415); Chile, Argentina y Brasil, 1 especie. Un géne-

ro (Hypenetes) con 11 especies de distribución Etiópica y Neotropical, tiene

9 especies propias de Chi:e. Dos géneros (Saropogon y Andrenosoma) son Ne-

árticos, Neotropicales, Paleárticos, Etiópicos, Orientales y Australianos en dis-

tribución; Andrenosoma con un total de 43 espec:es, tiene 1 especie propia de

Chile, A. rufiventris (Blanchard); Saropogon con un total de 90 especies tiene

l especie limitada a Chile, Saropogon nigronasutus Bigot (se conoce solamen-

te un ejemplar, el typo, y la localidad indicada por la etiqueta puede ser

considerada dudosa). Un género (Scylaticus) con 31 especies de distribución

Neotropical, Paleártica, Etiópica y Oriental, tiene 5 especies propias de Chile.

El género Efferia, de distribución Neotropical, con 189 especies, tiene 1 espe-

cie, Efferia patagonensis (Macquart), señalada para Argentina y Patagonia,

esta especie podría estar presente en Chile.

De acuerdo con los registros actuales, la fauna de asilidos chilenos es más

abundante en la parte central del país; 82 especies viven entre las provincias

de Coquimbo y Llanquihue (Fig. 414), 11 entre Tarapacá y Atacama y 7 en-

tre Chiloé y Magallanes (unas pocas especies tienen una distribución incierta).

Esta situación refleja en parte las relaciones de los asilidos con otros imsectos

(sus presas), en la parte central del país están ubicados la mayoría de las

plantas florales, las cuales atraen hymenópteros y lepidópteros, que constituyen

las presas más comunes de los asilidos. La importancia de la zona central del

país en cuanto a variedad de especies, podría también ser artificial, debido a

que esta es la zona donde se han efectuado las mayores colectas; las regiones

remotas están continuamente entregando nuevas especies, lo que desminuye

la desprc porción en el número de taxa.

Bromley (1932:261) dice: “Los asilidos son preeminentemente insectos de

regiones secas, calurosas y abiertas, no es sorprendente por lo tanto descubrir

que la fauna de zona lluviosa y fría de la parte más austral de Sudamérica

no es rica en este grupo”. Bromley registró 28 especies de la región compren-

dida entre Concepción y Magallanes, incluidas las zonas argentinas al sur de

Río Negro (F. W. Edwards agregó en el mismo trabajo de Bromley 2 especies

más, subiendo el total a 30); de estas especies umas pocas son exclusivas de

Argentina, otras han sido puestas en sinomimia; en este trabajo se registran

53 especies para el territorio chileno al sur de Concepción. La zona norte del

país cumple mejor con la descripción dada por Bromley para encontrar abun-

dancia de asilidos, sin embargo sólo 33 especies han sido registradas entre Ta-

rapacá y Coquimbo. La mayor cantidad de especies se encuentra en la zona

central donde el clima es más moderado.

Futuros estudios modificarán con seguridad este criterio, o el presentado

por Bromley, cuando se encuentren otros parámetros además de temperatura

y caída pluviométrica que estén rigiendo la distribución de los asilidos.

So ENT A TEC A

La sistemática de los asilidos fué estudiada primeramente por Luew

(1847), y posteriormente por Shiner (1868), Williston (1908) y Hermann

(19420). Estos autores basaron sus sistemas principalmente en la fauna europea

y norteamericana, con poca consideración para las especies neotropicales, las

cuales en ese tiempo eran poco conocidas o conocidas sólo superficialmente.

Hardy (1934—1935), modificó los sistemas presentados por los investigado-

res anteriores e incluyó las especies australianas. En 1948, completó su sistema

en el cual incluyó toda la fauna de asilidos del mundo.

De las 4 subfamilias propuestas en los sistemas antiguos (Dasypogoninae,

Asilinae, Leptogasterinae y Laphriinae), solamente Dasypogoninae y Asilinae

fueron mantenidas por Hardy; las otras dos fueron consideradas solamente tri-

bus; Leptogastrinae una tribu de Asilinae y Laphriinae una tribu de Dasypo-

goninae. Hardy separó las dos subfamilias de acuerdo con el número de

segmentos de los palpos y de las antenas: Dasypogoninae los que poseen el

tercer segmento antenal con uno o dos microsegmentos, nunca con stylo, y los

palpos maxilares de dos segmentos; Asilinae con un stylo largo corrientemente

filiforme al término del tercer segmento, articulado en la base, y los palpos

maxilares siempre de un segmento. De acuerdo a lo expresado por Hardy,

estos son dos grupos separados sin conexión conocida entre ellos. Carrera

(1949), al trabajar material de asilidos neotropicales, indicó que el género

Glaphyropyga Shiner, Leinendera Carrera y Lycomyia Bigot que sin duda per-

tenecen a la subfamilia Asilinae, tienen el stylo muy reducido (Fig. 292), y

que Atractia Macquart (claramente un Dasypogoninae) tiene el tercer seg-

mento antenal extendido de tal forma que parece un stylo. Carrera encontró

que con la excepción de la tribu Xenomyzimi: (Holcocephala), las tribus de

la subfamilia Dasypogoninae pueden agruparse en dos secciones: una con el

prosternum grande, extendido hasta el pronotum, y la otra con el prosternum

reducido a sólo una pequeña placa quitinizada ubicada entre las coxas ante-

riores. :

Hull (1962), trabajando los géneros de asilidos del mundo, reconoce 5

subfamilias: Dasypogoninae (10 tribus), Leptogasterinae, Laphriinae (4 tri-

bus), Megapodinae, y Asilinae (2 tribus).

Martin (1968), separó Leptogasterinae de Asilidae, creando la familia

Leptogastridae (género typo Leptogaster Meigen 1803).

Se encuentra en preparación un catálogo de los Dípteros de América al

sur de Estados Unidos, este trabajo se está publicándo bajo los auspicios de

“Fundacao de Amparo a Pesquisa do Estado de Sao Paulo” Brasil; los asilidos

son trabajados por el Dr. C. H. Martin de Oregon State University.

LES

ASILIDAE DE CHILE. De las cinco subfamilias reconocidas por Hull (1962),

sólo Leptogastrinae no está presente en Chile. Las subfamilias Asilinae y Mega-

podinae son fácilmente separables y éstas a su vez de Dasypogoninae, sin embar-

go existen muy pocas diferencias entre Dasypogoninae y Laphriinae y éstas

además no son constantes. Considerando que este trabajo se basa sólo en las

especies chilenas, no se ha hecho intento de modificar la clasificación por

subfamilias. Las tribus reconocidas por Hull (1962) no han sido prácticas pa-

ra el material chileno debido a la confusión que existe en los límites asigna-

dos a cada una de ellas y la cantidad de excepciones dadas por Hull para

cada uno de los caracteres por él usados. Por ésto no se han usado agrupa-

ciones tribales en este trabajo.

De todos modos un intento de ordenar los géneros presentes en Chile,

dentro del sistema propuesto por Hull, sería como sigue:

DASYPOGONINAE

Dioctrini: Pritchardia

Phellini: Obelophorus

Laphystini: Hexameritia

Stenopogonini: Alyssomyia, Creolestes, Dasycycton, Dasypecus, Graptostylus

Hypenetes, Leptochelina, Oberon, Prolepsis, Scylaticus

Dasypogonini: Aratopogon, Deromyia, Saropogon, Theromyia

LAPHRIINAE

Andrenosomint: Andrenosoma

Atomosini: Lamprozona

MEGAPODINAE

Pronomopsis

ASILINAE

Asilini: Atractocoma, Chilesus, Cratolestes, Cratopoda, Eccritosia, Efferia,

Eremomyia, Lochmorhynchus, Lochyrus, Lycomyia, Mallophora, Me-

gametopon, Menexenus, Myaptex, Nesiotes, Nomomyia, Philonerax,

Rhadinosoma, Stizolestes, Zoticus.

La mayoría de los asilidos chilenos han sido tratados y citados para el

país en los siguientes trabajos: Macquart 1838-1855; Bigot 1857, Philippi

1865; Williston 1891; Kertesz 1908; Hermann 1912; Carrera 1949; Stuardo

1946.

En este trabajo, se han reconocido 40 géneros (10 nuevos) con 102 espe-

cies (40 nuevas)

GENEROS Y ESPECIES DE ASILIDOS CHILENOS

Subfamilia DASYPOGONINAE

Alyssomyia Hull

brevicornis (Philippi)

bulbosa n. sp.

pampina n. sp.

Araiopogon Carrera

choapensis n. sp.

cyanogaster (Loew)

fraternus (Bigot) n. comb.

gay: (Macquart)

perniger (Schiner) n. comb.

Creolestes Hull

rubricornis (Philippi) n. comb.

rufescens (Philippi) n. comb.

keissert (Carrera £ Papavero) n. comb.

nigribarbis (Philippi) n. comb.

parvum (Bigot) n. comb.

Dasypecus Philippi

heteroneurus Philippi

Deromyia Philippi

fuscipennis (Blanchard)

nigriventris (Bigot)

Graptostylus Hull

dolosus Hull

Hexameritia Speiser

micans (Philippi)

Dasycyrton Philippi

arrayanensis mn. sp.

coquimbensis n. sp.

gibbosus Philippi

lanosus N. Sp.

medinae n. sp.

minusculus N. sp.

notocinereatum n. sp.

papaverol n. sp.

sucinopedis n. sp.

tener Bigot

Hypenetes Loew

asiliformis Wulp

critesi M. sp.

davidsoni M. Sp.

digitatus N. Sp.

fucosus N. Sp.

magellanicus N. sp.

punctipennis (Philippi)

schineri n. sp.

valentinei n. sp.

Leptochelina n. gen.

jaujensis M. Sp.

Obelophorus Schiner

landbecki (Philippi)

terebratus (Macquart)

Oberon Carrera £ Papavero

fuluicornis (Macquart)

fulvipes (Philippi) n. comb.

Pritchardia Stuardo

curicoensis N. Sp.

hirtipes (Macquart)

puella (Bromley)

tertialis (Bromley)

Prolepsis Walker

quadrinotata (Bigot)

Saropogon Loew

nigronasutus (Bigot)

Scylaticus Loew

chilensis (Macquart) n. comb.

cuneigaster Mm. sp.

lugens (Philippi) n. comb.

rufipes (Philippi) n. comb.

venustus (Philippi)

Theromyia Williston

murina (Philippi)

nana (Pritchard)

hegnat n. sp.

Subfamilia LAPHRUNAE

Andrenoseoma Rondani

rufiventris (Blanchard)

Lamprozona Loew

auricincta Loew

chilensis (Herman) n. comb.

Subfamilia MEGAPODINAE

Pronomops:s Hermann

chalybea Hermann

rubripes Hermann

talabrensis Artigas

Subfamilia ASILINAE

Atractocoma nm. gen.

nivosa n. sp.

Chilesus Bromley

geminatus Bromley

Cratolestes Hull

chiliensis (Macquart) n. comb.

wirthi n. sp.

Cratopoda Hull

emarginala n. sp.

helix (Bromley) n. comb.

Eccritosía Schiner

rubriventris (Macquart)

Efferia Coquillet

patagonensis (Macquart) n. comb.

Eremomyia n. gen.

tumbrensis M. sp.

Lochmorhynchus Engel

borrori n. sp.

griseus (Guerin)

puntarenensis n. sp.

Loahyrus n. gen.

balmacedensis Mn. sp.

crassus (Bromley) nm. comb.

freziert n. sp.

Lycomyia Bigot

germaimu Bigot

Mallophora Macquart

freycineti Macquart

Megametopon n. gen.

inmisericorde mM. sp.

occidentale (Philippi) n. comb.

Menexenus n. gen.

concepcionensis (Bromley) n. comb.

veredus N. sp.

Myaptex Hull

brachyptera (Philippi) n. comb.

hermanni Hull

vexillaria n. sp.

virilis mn. Sp.

Nestotes n. gen.

chiloensis n. sp.

Nomomyia n. gen.

tvettene M. Sp.

murina (Philippi) n. comb.

Philonerax Bromley

mucidus (Walker)

chilechicoensis Mm. Sp.

Rhadinosoma n. gen.

calderense mM. Sp.

Stizolestes Hull

aureomaculatus (Bromley) n. comb.

atribarbis n. sp.

=A8

eritrichus (Philippi)

gay: (Macquart) n. comb.

mayi (Edwards) n. comb.

modellus (Bromley) n. comb.

nigriventris (Philippi)

pamponeroides (Edwards) n. comb.

Zoticus n. gen.

toconaoensis n. sp.

ESPECIES INCERTAE SEDIS

Asilus megastylus Philippi

Asilus poecilopus Philippi

Atomosia modesta (Philippi)

Dasypogon punctipennis Macquart

Dasypogon latus Philippi

Saropogon carbonarius Philippi

Scylaticus nitidigaster (Macquart)

Stichopogon ocrealis (Rondani)

Promachus spissibarbis (Macquart)

CLAVE PARA LOS GENEROS DE ASILIDOS CHILENOS

Espina de la tibia anterior presenter(Fus. 110 2

Espina: de la tibia “anterior “AU 7

Cuarta celda posterior cerrada y peciolada (Fig. 13) ............ 3

Cuarta celda posterior abierta, o cerrada en el borde del

ala, nunca peciolada (Fig. 118) (Dasypogoninae) ............ 4

Gibosidad facial muy grande, en forma de capuchón, con el

ápice largo dirigido hacia adelante (Fig. 213); insectos

robustos (Mesapodina an Pronomopsis

Gibosidad facial muy reducida o ausente; insectos delgados,

esbeltos (Dasypogonminac) ta Deromyia

Cerdas scutellares presentes ai tas 5

Eerdas scutellares aus ctes Oberon

Pulvilli más largo que la mitad de las uñas; cuerpo azul

MELAMINA 6

Pulvilli no más largo que un—cuarto del largo de las uñas

(Eg. 186) qe jEmplares cate rs Theromyia

Epandrium totalmente dividido en dos partes (Fig. 165)?

cata dicane Araiopogon

Epandrium de una pieza, pero corrientemente con una

gran hendidura en forma de V que divide los tres—cuar-

tos apicales del “epanduum Big AS) AR Saropogon

M., M,, y Cu,, no alcanzan el borde del ala; cuarta cel-

da posterior cerrada lejos del borde del ala, y sin pecíio-

ls GO) tt tira ARAN Dasypecus

VMENIACIONAdE OMA OM 8

Largo del microsegmento antenal, stylo, o de ambos com-

binados, por lo menos la mitad del largo del tercer seg-

mento (Fig "OL: 20M) uta 9

2 No se conocen caracteres apropiados para separar las hembras de Araiopogon

y Saropogon.

DOS

Sr.

10”.

1110.

MIE

12(11).

ES:

14(13).

gd”,

Largo del microsegmento antenal (el microsegmento a ve-

ces falta), stylo, o los dos combinados, menos de la mi-

tatmdel darso ¿del tércerosegmento! (Fig 34) Decenas: ZN

Celda marginal abierta (Fig. 59) (Dasypogoninma8) mm... 37

Celda marginal cerrada (Fig. 224) (Asilina€) .mmmniinin.... 10

Esclerite basalar con un proceso tuberculiforme, bien desa-

rrollado (Fig. 300); 3 celdas submarginales (Fig. 298);

O E A A Mallophora

Esclerite basalar sin ese proceso; corrientemente 2 celdas

submaramaless, unas IGUdasi hdr caida di

R, termina antes o en el mismo ápice del ala (Fig. 377) ........ 12

R, termina detrás (posterior) al ápice del ala (Fig. 349) ........ 1)

Sternite 8 de los machos con 2 procesos platiformes muy

separados, cubiertos de abundante pelo largo, formando

una estructura en forma de cucharón (Figs. 363, 367);

ovipositor globoso, con una profunda constricción a cada

lados antes delrápice Er 900) do o E Philonerax

Sternite 8 de los machos sin procesos platiformes, o si tal

procesos están presentes, ellos no son ni muy separados

ni dirigidos hacia afuera; ovipositor no como el descrito

A A O To RS 13

Borde ventral de los dististyli con espinas negras, cortas y.

gruesas, situadas lateralmente y fácilmente visibles en vis-

ta ventral (Fig. 374); ovipositor con 12—13 pares de es-

pinas gruesas (Fig. 373); barba, mystax, pleura - toráxica,

y primer tergite abdominal densamente piloso; ejempla-

TESTO DAS TOS A A. O A IO Eccritosia

Dististyli y ovipositor no como en la descripción anterior;

si existen espinas en el ovipositor, éstas son pequeñas y

débiles (Cratolestes chiliensis Figs. 230, 231); ejemplares

de tamaño mediano, nunca Muy TObUstoS ...oocoaccicinncc.. 14

Epandria globosos desde una vista dorsal (Fig. 254); ovi-

positor bifurcado en el ápice (Fig. 259). ........... Eremomyia

Epandria alargados; ovipositor no bifurcado en el ápice ........ 15

.—=5l—

15(14).

115

16(15).

18,

R, angulada en la base, algunas veces con una corta ve-

na trunca (base de la vena transversa sectorial) (Fig.

252); fémures medios con no más de 2 cerdas fuertes en

el centro del lado posterior; machos sin un mechón de

pelos en el sternite 8, y área costal del ala no expandi-

dal. claramente A e AA NN 16

KR, no angulada en la base, o si ligeramente angulada, la

sección transversal muy corta (Fig. 269); fémures media-

nos con 4—7 cerdas robustas en el centro del lado pos-

terior; machos con un mechón de pelos largos en el

sternite 8 (Figs. 261, 263), y el área costal del ala visi-

blemente ¿EXP Lochmorhynchus

Genitalia masculina comprimida, epandrium con una de-

presión en el centro del lado exterior (Fig. 249); ovipo-

sitor fuertemente comprimido, en forma de lámina ....

Genitalia masculina no comprimida, sin una depresión co-

mo la descrita arriba (Figs. 227, 234); ovipositor co-

rrientemente cónico, no comprimido o sólo levemente

(Bies. 290, 291, 290)7 cocaina ttuanos sota eta Cratolestes

Costados del postmesonotum (Fig. 3, slpn.) con pelo lar-

SOMO MENO ad E ASI DE: Seno ¿48

Costados del postmesonotum no piloso, corrientemente so-

lo con una fina" micro pubescenca ÓN 21

Giba facial reducida a una moderada elevación en el bor-

de oral; mystax de pelos largos, débiles y ralos reparti-

dos sobre la pequeña giba facial (Fig. 335); 2 cerdas

scutelares; disco del scutellum con pelos cortos, débiles,

no más largos que un—cuarto del largo de las cerdas

A A A A A O o te Ro Menexenus

Giba facial bien desarrollada, ocupando tres—cuartos a

cuatro—quintos de la cara; mystax de abundantes pelos

largos y fuertes; corrientemente más de 2 cerdas scute-

llares; disco del scutellum con abundante pelo, por lo

menos un—tercio del largo de las cerdas marginales .......... 19

19(18).

19:

20 (19.

23 (22.

24 (21).

Disco del scutellum corrientemente con pelos lanosos, blan-

cos, ordenados en dos mechones, uno a cada lado del

disco, dejando entre ellos un espacio más o menos des-

nudo a lo largo de la linea media; fémur anterior con

una tila de más de 8 cerdas espinosas en la cara ven-

A A te ada le dtes Ne LOd Cratopuda

Vestidura del disco del scutellum no como en la descrip-

ción anterior

De € a 20 cerdas occ'pitales robustas a lo largo del borde

posterior de cada ojo; genitalia masculina grande y glo-

bosa (Fig. 280); tercer segmento antenal piriforme, de ta-

maño corto a mediano (Fig. 287 muestra tamaño mediano)

e dt De e e O O Lochyrus

Cerdas occipitales indefinidas, el resto de la vestidura occipital

formada por abundantes peos finos y largos doblados hacia

adelante; tercer segmento antenal largo y delgado (Fig. 395)

genitalia masculina pequeña corrientemente no globosa

A A A A e e Aa EEE Stizolestes

Primer tergite abdominal con una depresión en la línea

mediodorsal, y algunas veces con el borde posterior se-

mejando estar interrumpido (Fig. 345)

Primer tergite abdominal normal, no como en la descrip-

ción anterior

Cuerpo y patas con pelos blancos fusiformes, ralos, y

usualmente comprimidos contra la superficie (Fig. 220)

AT A TS RO A US Atractocoma

Pelos del cuerpo y las patas normal, no como en la des-

ELIPCIÓN. PALLELOLO sd pi de IB toda 23

Fémures posteriores con una línea de 4-9 cerdas robustas;

tunda del pene terminada en 2 procesos largos en for-

made RUSO (BE ALO ii pia Myaptex

Fémures posteriores sin tal línea de cerdas; funda del pe-

ne como enla Bid A dt aa Nesiotes

Costados de los tergites 1-4 con pelos finos de tamaño

mediano y 1-5 cerdas débiles, piliforme, corrientemente

comprimidas contra la superficie ooo... Megametopon

26 (25).

20%

30.

31 (30).

Costados de los tergites 1-4 con pelos ralos gruesos y 2-4- -

cerdas gruesas, dirigidas lateralmente o reclinadas ........... 29

Sin giba facial pero el borde oral ligeramente abultado;

mystax reducido a unos pocos pelos y cerdas en el bor-

A A A O Rhadinosoma

Giba facial bien desarrollada; mystax de abundantes pelos

A A EA, OTI le Ie T QU» de qero Mae dl 26

Sin cerdas en el collar; R, angulada en la base, vena

trunca generalmente bien desarrollada; machos con fé-

mures dilatados y borde costal del ala expandida (Fig.

361); bordes posteriores de los sternites sin cerdas noto-

A A od le ARES DANS LACTEOS NOTA Nomomyia

Cerdas del collar presentes; R, no angulada en la base,

sin vena trunca; machos con los fémures no dilatados y

el borde costal del ala no expandido; borde posterior de

¡OS FSteraites COM CECI ASMA O Zoticus

Celda. marginal cablebta mit 28

Celda margiral cerrada atada A NA 38

Cuarta celda posterior cerrada: y pedicelada ...oococcnniciinenicnies. 29

Cuarta celda posterior abierta, o cerrada al borde del ala,

nunca "pedicelada ono Eolo trio a 30

Abdomen anuclto y «deprimido (Fig. 98) 0 ca Hexameritia

'¡Abdomentnias tomemos cda dico AN 30

Dos o más venas transversas en la celda subcostal (Fig.

145); con una notable armadura multiespinosa en la

parte. ventral de los fémures medios (Fig. 142) HN

el O e ei leed RR ea AECA Prolepsis

Sin venas transversas en la celda subcostal; sin la arma-

dura espinosa descrita anteriormente en el fémur medio

a ds. adododaducios: 31

R, con una distinta vena trunca en la base; ovipositor

largo, delgado y cilíndrico, algunas veces sagitiforme;

ejemplares grandes robustos y peludos, mayores de 30

mm de LABOR CAA Obelophorus

31.

32 (31).

34 (33).

37 (9”, 36),

Sin la combinación de caracteres indicada anteriormente ... 32

Tercer segmento antenal distintamente oval (Fig. 16); ovi-

PONIOr sas espinas (BIOS al aa) ida alioli Pritchardia

"Tercer segmento antenal no como el descrito anteriormen-

tes ovipositor con espinas (Pies 44247, 097400), oacaconcicananinto 33

Pulvilli no más de un—quinto del largo total de las uñas;

unas suavemente curvadas (Elg. IOUtaetint Leptochelina

Pulviili no menos de la mitad del largo total de las uñas;

Unas CUNA das non MA A ad 34

Giba facial ausente, muy poco desarrollada o expresada so'o

como un levantamiento en el borde oral (Fig. 42); epan-

drium con un proceso terminal corto o largo como en

las Figs. 43 y 45; pulvilli pequeño, aproximadamente de la

tad” del “largo total de la Uan dd Alyssomyia

Giba facial presente, bien desarrollada; epandrium sin proceso

terminal largo (Figs. 50 y 51); pulvilli mayor que la mitad

del largo total de las uñas, estas son moderadas o fuerte-

MENTE CUNA A to areas ds Creolestes

Tercer segmento antenal fuertemente pedunculado, distal-

miente davado? (ries. III erstes: Hypenetes

Tercer segmento antenal variable, pero nunca fuertemente

bee USO ORO Ec pus 36

Tercer segmento antenal con microsegmento y stylo, los

cuales combinados son por lo menos un—cuarto del lar-

go del segmento (Fig. 77-86); R, termina detrás (pos-

ternot)yroment el apre deltala(Bles OB OE. ae 37

Tercer segmento antenal con un microsegmento no mayor

que un—sexto del largo del segmento (Fig. 159); R,

termina distintamente antes (anterior) del ápice del ala

(A O A Scylaticus

Abdomen corto, ancho, deprimido; segundo, tercero y

cuarto segmento de los tarsos posteriores subesféricos

A O eo o oe e Dasycyrton

Abdomen largo y cilíndrico; segundo, tercero y cuarto seg-

mentos de los tarsos posteriores cilíndricos (Fig. 71) .....

Graptostylus

38 (27”) Costados del postmesonotum sin pelos, o con sólo una fina mi-

cropubescencia. (Laphrinas) co Aoc Andrenosoma

38”. Gostados del postmesonotun poo 39

39 (38”). Tercer segmento antenal con 2 microsegmentos, el segun-

do más largo que el primero (Figs. 223, 292); abdomen

cilíndrico, más angosto que el tórax; largo mayor de

ZO O A atado 40

99. Tercer segmento antenal con un solo y poco distinto mi-

crosegmento (Fig. 206); abdomen deprimido, tan ancho

como el tórax (Fig. 203); menores de 10 mm de largo

(Lamphtinas) tico palos ds o Lamprozona

40139). Stylo antenal tres o cuatro veces más largo que el micro-

segmento, y un—tercio del largo del tercer segmento an-

tenal. (Pi a o orto ao E Chilesus

00% Stylo antenal dos veces el largo del microsegmento, y

un—octavo el largo del tercer segmento antenal (Fig.

e E RAE Ta E Dra Lycomyia

SUBFAMILIA DASYPOGONINAE

Las especies chiienas de Dasypogoninae pueden ser reconocidas por la

siguiente combinación de caracteres: palpos maxilares de dos segmentos; cuat-

ta celda posterior y celda marginal abiertas, o una abierta y la otra cerrada,

nunca ambas cerradas, excepto en Cratolestes (Fig. 13); tercer segmento an

tenal con o sin uno o dos microsegmentos que juntos no son más largos

que un tercio del largo del tercer segmento; epandrium e hypandrium no fu-

sionados, excepto en Deromyta (Fig. 175, 179) donde ellos forman un anillo

completo; ovipositor con o sin espinas en los acanthophorites; tibia anterior

con espina o sin ella.

La subfamilia está representada en Chile por 17 géneros y 56 especies.

ALYSSOMYIA Eluil; 1962. p. 143

TYPO DEL GENERO, Clavator brewicornis Philippi 1865, por designación

original.

Cabeza en vista frontal un tercio más ancha que alta; vertex moderada-

mente hundido. Cabeza en vista lateral con el área postocular un sexto del

ancho del ojo; cara plana, sin giba facial. Tercer segmento antenal no pedi

celado, comprimido, dilatado al centro, corrientemente dos veces más ancho

que el segundo segmento, en algunas especies sólo un tercio más ancho; mi-

crosegmento levemente truncado, con una corta espina apical. Mystax usual-

mente en la parte baja de la cara, dirigido hacia abajo, pelos inferiores más

largos. Mesonotum con marcas variables, en algunos totalmente negro. Vesti-

dura del mesonotum corta corrientemente de pelos ralos fusiformes; cerdas

dorsocentrales distintas. Scutelium cubierto con micropubescencia, a veces

además con algunos pocos pelos cortos; 2-4 pares de cerdas scutelares, costa-

dos del postmesonotum con micropubescencia. Celda marginal abierta; cuarta

celda posterior cerrada con un largo pedicelo; R, alcanza el borde del ala

antes del ápice; R, alcanza el borde del ala ligeramente después del ápice;

celda anal ligeramente abierta o cerrada en el borde del ala; M, y m forman

un ángulo de 1300 -1409, Tibias anteriores sin espina. Abdomen corriente-

mente largo, ligeramente truncado. Alas cortas, corrientemente más cortas que

el abdomen. Genitalia de los machos de tamaño variable, rotada en 900—1800;

Hypandrium alargado y dirigido hacia atrás o hinchado y curvado ventral-

mente en un ángulo de 909; epandria de tamaño variable, con un proceso di-

gitiforme dirigido hacia atrás; gonopodos hinchados en la base, con un pro-

ceso terminal variable. Genitalia de la hembra truncada, telescopeada; ovipo-

sitor con 8—9 pares de robustas espias.

DISTRIBUCION: Neotropical (Chile), 6 especies.

DISCUSION. El ejemplar typo de Clavator brevicornis Philippi se ha

perdido. Creo que hay un error en Philippi 1865, pp. 699—700, donde en la

Fig. 3 se indica la antena de esta especie. Philippi describió cinco especies de

Clavator e ilustró la antena de tres de ellos: C. punctipennis, C. nigribarbis,

y C. brevicorr:<. Los tres dibujos están ordenados en línea de acuerdo al lar-

go del tercer segmento antenal, Fig. 1 el más corto y Fig. 3 el más largo. La

descripción de Philippi para C. brevicornis dice: “tercer segmento antenal

suboval y ligeramente pedicelado” [del latín]. El tercer segmento antenal mos-

trado en la Fig. 3 es fuertemente pedicelado. Philippi asignó el nombre

brevicornis a esta especie posiblemente debido a lo corto de la antena. En mi

opinión la Fig. 1 es la antena de C. brevicornis Philippi y no la Fig. 3.

Hull, 1962, Fig. 154, muestra la antena de Alyssomyia brevicornis (Phili-

ppi), este dibujo es correcto y debe ser considerado para la diagnosis del

género Alyssomyia.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE ALYSSOMYIA

Machos st A O ON 2

A O A E o and: 4

Epandria dirigidos casi derecho hacia atrás; hypandrium de

tamaño moderado con un largo proceso dirigido poste-

riormente y suavemente doblado hacia el ápice de los

epañdria MEE O al store oa ca DER 3

Epandria hinchados en la base, extendido posteriormente

en un proceso digitiforme que alcanza más allá del ápi-

ce del hypandrium; hypandrium globoso, doblado en un

angulo de 96% con el ápice dirigido ventralmente (Fig.

oia aia A. bulbosa n. sp.

La parte más ancha del tercer segmento antenal sólo leve-

mente más ancha que el segundo segmento; cuerpo or-

dinariamente negro con manchas rojas en los costados

de los tergites; fémures posteriores negros, con el sexto

Pasa TOO al ost cio de A. pampina n. sp.

La parte más ancha del tercer segmento antenal por lo

menos el doble de ancho del segundo segmento; cuerpo

ordinariamente rojizo; fémures posteriores negros en la

parte; exterma' y rojizos en-la parte Mtra

A A. oa A. brevicornis (Philippi).

Espinas: del” oyipositor blancas oasis Á. pampina n. sp.

Espinas del ¡ovipositor negras O cate rojizas q 5

Sternite 8 emarginado en el borde posterior (Fig. 44); pe-

los del último segmento abdominal finos, no distintamen-

CEAMSE Oca A. brevicornis (Philippi).

Sternite 8 no emarginado (Fig. 47); pelos del último seg-

mento abdominal gruesos, distintamente fusiformes ............

A. bulbosa n. sp.

Alyssomyia brevicornis (Philippi)

(Figs. 42 43, 44 y 182)

Clavator brevicornis Philippi, 1865, pp. 699—700, Fig. 1 (no Fig. 3), Santiago;

Nlapel.

Hypenetes brevicornis (Philippi). Bromley, 1932, p. 264, Sur de Chile.

Pritchardia brevicornis (Philippi). Stuardo, 1946, p. 80.

Alyssomyia brevicornis (Philippi). Hull, 1962, p. 144, Figs. 154, 480, 1013,

1022, y 1830; Carrera y Papavero, 1965, p. 51, Lima, Perú.

TYPO: perdido. Se ha designado como neotypo a un Y de Hacienda

Illapel, Coquimbo, 00 m., Chile, Nov. 21-24, 1959, L.E. Peña; este ejemplar

está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción,

Chile.

DIAGNOSIS. Especie café, con el cuerpo cubierto de pelo corto, ralo,

blanco; mystax blanco; tercer segmento antenal negro; fémures y tibias negros

interiormente y café rojizos por el interior; genitalia del Z parcialmente rota-

da, hypandrium plano de base triangualr, ápice prolongado en un proceso

igitiforme, levemente curvado hacia el ápice de los epandria.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara cu-

bierta por densa micropubescencia dorada; frente y oce:larium negro con mi-

cropubescencia rala dorada, ocelos negros brillantes; cerda ocelares blanca. Ca-

beza en vista lateral (Fig. 42): cara piana; sin giba facial; mystax blanco, ocu-

pando la mitad basal de la cara, pelos superiores más cortos que los inferiores;

los dos prmeros segmentos antenales café roj'zos, con peo blanco, corto y ralo,

tercer segmento antenal negro, expandido ventralmente, con un microsegmento

negro, más o menos cónico, con una espina terminal; barba blanca lanosa;

cerdas occipitales blanquíscas, más o menos ordenadas en una línea; en el

borde posterior de los ojos una línea de cerdas cortas blancas; área postocu-

lar negra con micropubescencia dorada dispersa y algunos pocos pelos blancos

ralos; proboscis negra brillante con escasos pelos largos en la base y pelos

cortos blancos en el ápice; palpos maxilares café, con pelos largos blancos.

Protorax negro con micropubescencia rala dorada y pelos blancos; cerdas del

coilar negras. Pleuras toráxicas con áreas rojizas negras, algunos sclerites con

áreas con micropubescencia plateada; mesopleura, pteropleura e hypopleura

con grupos de pelos bancos; cerdas mesepimerales amarillas. Mesonotum cu-

bierto de micropubescencia dorada, excepto sobre la ancha banda central y

las manchas laterales; callos posteriores y humerales semejantes al mesonotum;

disco mesonotal con gruesos pelos blancos cortos y ralos, igualmente los ca-

=59=

llos posteriores y humera/es, excepto sobre la banda central y las manchas la-

terales; disco del scutellum negro, con micropubescencia rala, dorada; 7-8

cerdas dorsocentrales cafés, ubicadas detrás de la sutura transversa; 3 cerdas

blancas, cortas en los callos humerales; 3 cerdas notopleurales largas, café;

l cerda intraalar café; 2 cerdas postalares cafés; 3 pares de cerdas scutellares

blancas, con unos pocos pelos entre las cerdas; costados del postmesonotum

rojizo, cubierto de micropubescencia plateada, sin pelos. Alas hyal'nas, venas

café oscuras. Coxas rojizas y negras, parcialmente cubiertas con micropubes-

cencia plateada y pelos cortos, gruesos y blancos, más densos en la parte an-

terior de las coxas anteriores; fémures y tibias negras en el interior y rojizas

exteriormente, especialmente en los fémures; tarsos rojizos; pelos cortos, grue-

sos y blancos uniformemente distribuidos en los fémures, tibias y tarsos, espi-

nas blancas o cafés; uñas negras, quinto basal rojizo. Abdomen rojizo, dorso

negro, pelo corto, ralo, grueso y blanco, uniformemente distribuido sobre el

abdomen, sin cerdas, excepto a los costados del primer tergite. Gen'talia (Fig.

43) rotada en 900, café con abundantes pelos cortos y biancos; epandrium di-

vidido en dos procesos digitiformes, sin forma de tenaza; hypandrium largo,

aplastado, triangular en la base, el ápice se extiende posteriormente en un

proceso digitiforme, suavemente curvado hacia abajo, aparentando ser más

corto que los epandria; gonopodos hinchados en la base y prolongados en un

proceso digitiforme, más cortos que los epandria y el hypandrium.

HEMBRA. Semejante al macho, ovipositor telescopeado, con 8—9 pares de

espinas negras o rojizas (Fig. 44).

MEDIDAS. Largo total 8.1—12.3 mm, promedio 9.5 mm. (neotypo 11.1mm);

largo de ala 5.0—6.1 mm, promedio 5.2 mm (neotypo 6.5 mm); ancho de ala

1.3-2.8 mm, promedio 1.¿mm (neotypo 2.7mm).

MATERIAL EXAMINADO. 93 y 29. ACONCAGUA: 13 Río Blanco, Dic.

10, 1917, E. P. Reed (CAS). BIO—BIO: 13 (gen. prep.) Bio—Bío, 1904, P.

Herbst (Cas). COQUIMBO: 1% 192 (gen. prep.) Ei Calabozo, Hda. Illapel,

Nov. 22, 1959, L. E. Peña (INCO); 1 Hda. Illapel, 600 m, Nov. 1—7, 1954,

L. E. Peña (BRAS); 1% (neotypo) Hda. Illapel 0.0 m, Nov. 21-24, 1959,

L. E. Peña (INCO); SANTIAGO: 17 El Arrayán, Ene. 2, 1964 (CEE). ÑU-

BLE: 19 Tregualemu Maule=Ñuble, Dic. 6, 1953, LE. Pena (QA:

VALPARAISO: 1¿G El Salto, Valparaiso, Dic. 27, 1919, P. Herbst (INCO);

23 Valapraiso, Nov. 27, 1919, P. Herbst (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 482.

DISCUSION. Esta especie es variable. Las variaciones en tamaño han sido

dadas en las medidas. Los ejemplares varían desde negro a café claro; meso-

notum corrientemente café con bandas centrales y manchas laterales negruscas,

60.

algunos ejemplares con el mesonotum totalmente negro y los callos humerales

rojizos; los fémures y las tibias varían desde externamente negros e interna-

mente rojzos a café claro en el exterior y ligeramente más oscuro en el in-

terior; el dorso de los tergites varía desde café claro a negro intenso con los

bordes posteriores rojizos; las espinas del ovipositor de la hembra van de ne-

gro a café rojizo.

Las hembras son difíciles de separar de 4. bulbosa n. sp., A. brevicornis

tiene pelo más fino en el abdomen, y el sternite 8 (Fig. 44) tiene el borde

posteror emarginado (después de aclarar); A. bulbosa tiene pelo más grueso

en el abdomen y el sternite 8 no emarginado (Fig. 47).

Alyssomyia bulbosa n. sp.

(A SO)!

TYPO: Z, Quebrada Algodones, Carrizal Bajo, Atacama, Oct. 18, 1957,

L. E. Peña; este ejemplar está despositado en el Departamento de Zoología

de la Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo café, pelos y cerdas blancas, excepto las cerdas me-

sonotales que son negras; genitalia del macho grande; hypandrium g“oboso,

café brillante, ubicado dorsalmente; epandria largos, hinchados en la base,

extenddos posteriormente en un proceso digitiforme.

DESCRIPCION DEL TYPO. (GZ). Cabeza en vista frontal; frente, cara

y ocellarium cubierto de micropubescencia dorada; frente con una fila de 5

cerdas en cada borde de los ojos; 4 cerdas ocelares cafés; ocelos amarillos.

Cabeza en vista lateral: cara plana; mystax blanco, ocupando la mitad basal

de la cara, con pelos más largos cerca del borde oral; primeros dos segmentos

antenales café oscuros; primer segmento antenal con pelos blancos, más largos

en el lado ventral; segundo segmento antenal con pelo corto y escaso de co-

lor blanco y cerdas robustas, cafés en el lado ventral, dirigidas hacia adelan-

te; tercer segmento antenal negro, fuertemente dilatado en el centro; barba

blanca; cerdas occipitales cafés; área postocular negra, con micropubescencia

rala dorada y plateada; proboscis negra, con pelos largos blancos en la parte

ventral, pelos cortos y amarillos en el ápice; palpos maxilares café rojizos, con

pelo largo blanco en la base y cerdas débiles, amarillas, en la mitad apical.

Protórax negro con micropubescencia dorada, pelos blancos; cerdas del collar

amarillentas entremezcladas con pezos blancos cortos, los pelos más escasos

en el dorso. Sclerites pleurales del tórax negros con grandes áreas de micropu-

bescencia dorada y plateada; mesopleura, sternopleura, pteropleura y metepis-

terna con grupos de pelos blancos; cerdas mesep“merales blancas, mezcladas

con pelos de largo semejante. Mesonotum y callos humeraies cubiertos de mi-

cropubescencia dorada, excepto sobre la banda central y las manchas laterales;

mesonotum con escasos pelos cortos blancos y cerdas café oscuras; 4-5 cerdas

blancas en los callos humerales; callos posteriores con peios blancos dispersos

y 2-3 cerdas postalares café, una más larga y curvada; 3 cerdas notopleura-

les negras y robustas; 1-2 cerdas intraalares negras; disco del scutellum negro,

con micropubescencia dorada rala y unos pocos pelos blancos; 2 pares de

cerdas scutelares cafés; costados del postmesonotum con densa micropubescen-

cia plateada, sin pelos. Alas (Fig. 48) hyalinas, venas café oscuras. Coxas ne-

gras y café rojizas, parcialmente cubiertas por densa micropubescencia platea-

da y pelo blanco, el cual es más abundante en la parte frontal de las coxas

anteriores; fémures y tibias negros exteriormente, el interior café rojizo; tarsos

café rojizos; pelos cortos blancos uniformemente distribuidos en los segmentos

de las patas, cerdas blancas, unas pocas cerdas cortas negras en los tarsos;

uñas negras, quinto basal rojizo. Abdomen café, con pelo corto blanco di'stri-

buido uniformemente, unos pocos pelos largos en los costados de los tergites

1-3; borde posterior de los tergites dorados, bordes laterales plateados; 3-4

cerdas blancas en los costados del primer tergite; séptimo segmento abdominal

más angosto que los restantes. Genitalia (Fig. 45) café oscuro brillante, casi

negra, rotada en 1809; hypandrium globoso, doblado hacia abajo en 909, sin

pelos en el área dorsal, pelos blancos en los costados; gonopodos con un pro-

ceso digitiforme dirigido posteriormente con algunos pelos blancos; epandrium

hinchado en la base, prolongado posteriormente en un proceso digitiforme que

se extiende más allá del ápice del hypandrium, con abundante pelo blanco.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Fig. 47) telescopeado, 8—9

espinas negras o rojizas; borde posterior del sternite 8 no distintamente emar-

ginado (visto después de aclarado).

El nombre bulbosa se refiere a la característica hinchazón de la genitalia

del macho.

MEDIDAS. Largo total 9.0—13.5 mm, promedio 10.0 mm (holotypo 11.5);

largo de ala 4.5—7.1 mm, promedio 5.2 mm (holotypo 5.9mm); ancho de ala

1.2-2.1 mm, promedio 1.7 mm (holotypo 1.9 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 253% y 239. ACONCAGUA: 19 (gen. prep).

10 km. Este de Papudo, Nov. 27, 1950, R. £ M. (CAS); 12 Río Blanco, Dic.

22, 1917, E. P. Reed (CAS). ATACAMA: 1¿G (holotyo) 12 Quebrada Algodo-

nes,- Carrizal Bajo, Oct. 18, 1957, L. E. Peña (INCO). COQUIMBO: 19

El Tangue, Coquimbo, Oct. 27, 1961, L. E. Peña (INCO); 12 Candelaria (2),

no date (JIM); 19 Hda; Illapel, Coquimbo, Nov. 20, 1961, L. E. Peña

(OTT); 1 Hda. Illapel, Coquimbo, 600 m, Nov. 1-6, 1954, L. E, Peña

(INCGO»); 19. (gen. prep.) 5 mi. North ot Ovalle, ¿Dic 1 190%; REVIA

(INCO); 12 Puerto Oscuro, costa de Coquimbo, Oct. 23-26, 1961, L. E.

Peña (OTI). SANTIAGO: 1g Ei Arrayán, Santiago, Ene. 2, 1964, Herrera

(CEE); 1 El Canelillo, Santiago, sin fecha, Etcheverry (CEE); 2Z (uno,

gen. prep.) Lampa, Santiago, sin fecha, Zapata (CEE); 1 19 Pudahuel,

Santiago, Oct., 1953 (MNHN); 19 50 km west of Santiago, Dic. 19, 1950,

R, £ M. (INCO); 19 34 km west of Santiago, Dic. 19, 1950, R. £ M. (INCO);

13 Pudahuel, Santiago, Oct. 1, 1953, L. E. Peña (INCO): 4g 12 Pudahuel,

Santiago, Oct. 1, 1953, L. E. Peña (BRAS); 1 12 (cópula) San Cristóbal,

Santiago, Feb. 3, 1951, J. Herrera (INCO). VALPARAISO: 12 El Salto,

Valparaíso, Dic. 27, 1919, E. P. Reed (CAS); 13 El Salto, Valparaiso, Ene.

1911, P. Herbst (INCO); 13 (gen. prep.) CAS); 19 La Paloma, Quilpué,

Dic., 1939, E. P. Reed (INCO); 13 La Calera, Quiipué, Dic. 1939, E. P.

Reed (CAS); 13 Reñaca, Dic. 11, 1946, E. P. Reed (CAS); 23 19% Val:

paraíso, sin fecha, Dr. Reed (CAS); 192 Valparaiso, Feb. 7, 1917, P. Herbst

CAS); 13 Valparaíso, NO 92, sin fecha, Dr. Reed (USNM); 17 Valparaíso,

Oct., 1909, P. Herbst (CAS); 1 Viña del Mar, Feb. 3, 1898 (INCO). Sim

localidad ni fecha: 1% 29 Chile, E. C. Reed (USNM); 1g 12 Chile, Dr.

Reed (CAS); 1 22 (JIM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 436.

DISCUSION. Esta es una especie variable; las variaciones de tamaño se

indican en las medidas. El mesonotum varía de café claro con banda central

y manchas lateraies café oscuro a negro uniforme sin marcas distinguibles;

cerdas mesonotales de amarillo a negro; abdomen de café claro a negro en

el dorso; lado exterior de los fémures y tibias de café a negro. Los adultos

nuevos son en general más claros; los ejempares de las regiones más al nor-

te del país son corrientemente más oscuros; los ejemplares engrasados son más

oscuros y su micropubescencia luce opaca. Las espinas del ovipos:tor varían

de rojo a negro.

Tres ejemplares, 1% y 29, sin localidad ni fecha, pertenecientes a la

colección José T. Medina (MNHN) tienen etiquetas manuscritas de Philippi

como sigue: “Clavator nigricornis”; “Clavator nigricornis Ph. n. sp.”; “Clava-

tor nigricornis? G faltan las antenas”. Philippi describió sólo una especie

nigricornis: Dolichogaster nigricornis Philippi, 1865, p. 683, un Mydaidae

(Diptera) de Chile. Estas tres etiquetas son nomen nudum.

Alyssomyia Pampina n. sp.

(Figs. 49,479)

TYPO: ¿ de Chinina, Talabre (Foconao), Cordillera Antofagasta, Oct.

6, 1955, L. E. Peña. Este ejemplar está depositado en el Departamento de

Zoo-ogía, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Similar a A. brevicornis (Philippi), pero el cuerpo negro

con marcas rojizas en los costados del abdomen; patas negras y café claro;

169

pelos del cuerpo cortos, gruesos, blancos, distribuidos uniformemente; mystax

blanco; cerdas blancas; genitalia pequeña, no hinchada, con un proceso digiti-

forme dirigido hacia atrás; ovipositor con espinas blancas. Alas hylinas.

DESCRIPCION DEL TYPO (¿G). Cabeza en vista frontal; frente y cara

negra con micropubescencia plateada, más densa en la cara; cerdas frontales

biancas. Cabeza en vista lateral: giba facial ausente, cara plana, proyectada

más llá del borde de los ojos; mystx blanco, ocupando cuatro—quintos de

la cara, pelos en el borde oral, largos; dos primeros segmentos antenales café

oscuros, el segundo más oscuro, con algunos pelos blancos en el lado ventral,

y más largos en el segundo segmento; tercer segmento negro, en su parte

más ancha, ligeramente más ancho que el segundo segmento, una—y—media

vez el largo de los dos primeros segmentos combinados, microsegmento tan

largo como el primer segmento, con una espina terminal (Fig. 49); barba

blanca; área occipital cubierta igual que la frente, cerdas amarillas, pelos

blancos y de largo semejante; área postocular con una fila de cerdas cortas

amarillas y pelos blancos; proboscis negra brillante, rojiza en el extremo, con

pelos blancos en la parte ventral y pelos cortos amarillos en el ápice; paipos

maxilares café oscuros, con pelo blanco ralo y unas pocas cerdas gruesas,

blancas, en el ápice. Protorax negre, con micropubescencia plateada poco den-

sa y pelos ralos blancos; cerdas del collar blancas, semejantes a los pelos.

Pleura toráxica negra, con micropubescencia blanca amarilla poco densa,

con grupos de pelos blancos en algunos esclerites; cerdas mesepimerales blan-

cas. Mesonotum, callos humerales y posteriores, negruscos con micropubescencia

rala, dorada y amarilla, excepto en las bandas centrales y en las manchas la-

terales; vestídura del mesonotum de pelos gruesos, blncos y ralos; 3 cerdas

blancas, cortas en los callos humerales; 3 cerdas notopleurales blancas; 2 cer-

das intraalares blancas; 3 cerdas postalares biancas y largas; 8 cerdas dorso-

centrales amarillas, inciinadas, haciéndose más largas hacia la parte posterior;

disco del scuteílum negro, con micropubescencia plateada, rala, sin pelos;

2 pares de cerdas scutellares blancas, con escasos pelos blancos entremezclados;

costados del postmesonotum negro, cubiertos con densa micropubescencia pla-

teada, sin pelos. Coxas negras con m'cropubescencia plateada y grupos de pe-

los gruesos blancos, más abundantes en la parte frontal del primer par de

coxas; trocanteres rojizo—café; fémures anteriores y medianos más bien negros,

con áreas café rojizas en la parte ventral, fémures posteriores negro brillante,

café rojizos en el sexto basal; tibias y tarsos cafés, tibias posteriores más oscu-

ras; pelos y cerdas blancas, pelos fusiformes; uñas negras brillantes, quinto

basal roj'zo. Abdomen negro, bordes laterales y posteriores de los tergites y

sternites rojizos; vestidura abdominal formada por pelos fusiformes blancos,

ralos, el primer tergite con peos largos y cimco cerdas blancas en cada lado.

Genitalia negra, rotada en 1709; epandrium dividido, cada rama ensanchada

en la base, proyectada hacia atrás en un proceso digitiforme; hypandrium

triangular en la base, prolongado en un proceso digitiforme suavemente cur-

vado hacia el ápice de los epandria; gonopodos débilmente ensanchados en

la base, con un proceso terminal; vestidura de los genitales de abundante pe-

lo blanco fusiforme; pelos de los gonopedos más denso.

HEMBRA. Semejante ai macho; genitalia telescopeada, ovipositor con es-

pinas blancas.

El nombre pampina se reiiere a la caraterística de la localidad del typo

(pampa).

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 9.5 mm; largo de ala 6.0 mm; an-

cho de ala 2.6 mm. Paratypos similares en tamaño.

MATERIAL EXAMINADO. 1 y 32. ANTOFAGASTA: 1% (typo)

Chinina, Talabre, Toconao, Cordillera Antofagasta, Oct. 6, 1955, L. E. Peña

(INCO); 192 Tumbre 3200 m, West Laskar Voicano, Oct. 1-6, 1955, L. E.

Pena (INCO)7 19 Incalri; Feb. 20, 1966: "8900::m, Etcheverry (CEE);

19 Socaire, Dic. 7, 1966, Etcheverry (INCO). ATACAMA: 19 Copiapó, Feb.

1965, Pino (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 473.

DISCUSION. Esta especie es similar a A. brevicornis de la cual los ma-

chos pueden ser separados por el color de las tibias posteriores, las cuales

son bicolor en brevicornis y negras en pampina; las hembras pueden ser se-

paradas por el color de las espinas del ovipositor, las cuales son blancas en

pampina y negras o café rojizas en brevicorais y bulbosa.

ARAIOPOGON Carrera

Araiopogon Carrera, 1919, p. 122; Hull, 1962, p. 281.

TYPO DEL GENERO: Dasypogon gayi Macquart, 1838, por designación ori-

ginal.

Cabeza en vista frontal un—cuarto más ancho que alta; vertex debilmen-

te hundido, ocellarium pequeño. Cabeza en vista lateral, área postocular

un—cuarto el ancho de los ojos; cara suavemente deprimida; sin gba facial.

Antenas largas: tercer segmento antenal una y media a dos veces el largo de

los dos primeros segmentos combinados; miczosegmento corto. Mystax de cerdas

escasas, dispuestas en 1-4 filas cerca de: borde oral. Mesonotum sin man-

chas características en el área central, vestidura más bien corta. Scutellum des-

nudo con micropubescencia; 1-4 pares de cerdas scutellares. Costados del

postmesonotum sin pelos. Celda marginal abierta; cuarta celda posterior

abierta; R, terminado antes del ápice del ala; R, termina detrás del ápice

del ala; celda anal angosta pero abierta en el borde del ala; M, y m forman

un ángulo de 1100—130%. Espinas de las tibias anteriores presentes. Abdomen

truncado, casi tan ancho como el tórax, a veces deprimido. Alas extendidas

más allá del ápice del abdomen. Gen'talia de los machos rotada en 45—900;

epandrium dividido longitudinalmente en dos partes; gonopodos globosos, con

un gran gancho terminal; hypandrium pequeño, dejando expuesta la cavidad

genital. Ovipositor con espinas.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile). 5 especies.

Este género se diferencia de Saropogon por tener el epandrium comple-

tamente dividido (Fig. 165); en Saropogon el epandrium es de una pieza, en

forma de escudo, v con una hendidura en forma de V en el ápice, que en

algunos casos divide los tres—cuartos apicales del esclerito (Fig. 181).

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE ARAIOPOGON

1: Fémures, tibias y tarsos un formemente rojizos o anaranja-

A E e Nao A. choapensis n. sp

pS Fémures, t'bias y tarsos negros o negros y rojizos en dife-

rentes) > COMDITACIONES WR A REO NE AENA Z

Ze Fémures, tibias y tarsos negros . A. perniger (Schiner) n. comb.

pad Fémures, tibias y tarsos negro y rojo en diversas comb'na-

COM a A a A A 3

Sel Mesonotum rodeado por una línea dorada que incluye to-

do o parte del scutellum (en ejemplares grasosos la lí-

nea dorada se ve gris); la mitad o los tres—cuartos pro-

ximales de los fémures negros, tibias y tarsos rojizos ........

O O Nc A. cyanogaster (Loew)

Sl Mesonotum mo rodeado por una línea dorada; color de los

fémures y las tibias en otras combinaciones; tarsos negros 4

O): Fémures "posteriores estos A. gayi (Macquart)

2 Fémures posteriores total o casi totalmente TOJIZOS conccccicn....

PE oe A A ES A ce)

Araiopogon choapensis n. sp.

(Fig. 442)

TYPO. Un g N9 13 de Choapa, Nov. 1931, F. Ruiz; este especimen está

depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción,

Chile.

DIAGNOSIS. Próximo a A. cyanogaster,pero con los fémures, tibias y

tarsos uniformemente de café rojizo, alas uniformemente cafés, segundo y ter-

cer segmento antenal roj'zo, y hembras con alrededor de 8 cerdas amarillas

en el mystax; mystax de los machos con 4 cerdas negras; cuerpo negro, pla-

teado en las áreas humerales, costados del mesonotum y scutellum; con una

línea blanca en el borde posterior de los tergites 2—5.

DESCRIPCION DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal: frente y cara

negra con micropubescencia plateada, rala, principalmente cerca de las an-

tenas y a lo largo de los bordes de los ojos; pelos frontales finos, blancos;

ocellarium negro, brillante, ocelos rojizos; cerdas ocelares finas, blancas, pro-

clinadas. Cabeza en vista lateral: mystax de 2 pares de cerdas largas, fuertes

y negras, un par a cada lado del borde oral; primer segmento antenal oscuro

en los costados, con abundantes pelos negros en las superficies laterales y

ventral, segundo segmento rojizo, semejante en largo al primero, con 2 cerdas

negras en el costado ventral y pelo corto amarillo en el ápice, tercer segmen-

to rojizo, atenuado distalmente, dos veces el largo de los dos primeros com-

binados, con un microsegmento cilíndrico, rojizo, que lleva uma corta espina

en el ápice; barba de pelo blanco fino; área postocular negra, con micropu-

bescencia plateada a lo largo de los bordes posteriores de foramen magnum

y de los ojos, vestidura de fuertes pelos cerdosos negros cerca del borde; cer-

das occipitales cortas, dispersas, café claras; proboscis negra briliante con pelos

largos finos y blancos en la mitad basoventral, pelos finos, cortos, amarillos

en el ápice; palpos maxilares negros con pezos cerdosos fuertes en el segundo

segmento, prime: segmento con pelo fino blanco. Protorax negro con pelos

bianquiscos, finos y ralos; lóbulo protoráccico con abundante pelo negro; cer-

das del collar, finas blancas, entremezcladas con pelo fino, ralo, blanco; una

gran área de micropubescencia plateada en el dorso. Pleuras toráxicas negras

brillantes, desnudas; cerdas mesepimerales piliformes, finas, blancas; un me-

chón de diminutos pelos blancos cerca del borde dei metepimerón. Mesono-

tum negro, sin lineas centrales ni manchas laterales destacadas, con pelos ralos,

amarillentos, cortos, en el dorso y pelos más largos y finos en los bordes la-

terales; micropubescencencia dorada pálida en los callos humerales, extendién-

dose anteriormente hasta tocar la mancha protoráxica plateada, en una mancha

a cada lado detrás de la sutura transversa, en los bordes posteriores de los

callos posteriores, y sobre todo el scutellum; 3 cerdas dorsocentrales, finas,

.— 67 —

blancas, ubicadas detrás de la sutura transversu; 2 cerdas notop!eurales café;

2 cerdas intraala1res café; 2 cerdas postalares café; 1 par de cerdas scutelares,

cortas, cafés. Costados del postmesonotum negros con micropubescencia pla-

teada, vis ble sólv desde una vista dorsal. Alas uniformemente café, ligeramen-

te rojizas hacia el borde costal, y venas roj zas, tornándose café hacia el borde

posterior. Coxas y trocánteres negros brillantes; coxas con micropubescencia

plateada y finos pe. os blancos, los cuales son más abundantes en la parte

frontal de las coxas anteriores; fémures, tibias y tarsos rojizos con pelo corto,

fino, dorado; espina de la tibia anter/or negra; sin cerdas en los fémures;

cerdas de las tib as y tarsos semejantes en color. Uñas negras. Abdomen ne-

gro brillante con reflejos azules, con pelo fino ralo y blanco en el dorso;

sternites con pelo fino blanco más largo; tergites 2-5 con una línea blanca

en el borde posterior, la cual es menos destacada en el tergite 5. Genitalia

negra, rotada en S0%; epandria cortos con pelo fino blanco; gonopodos glo-

bosos con pelo negro; hypandrium ancho, suavemente ahusado hacia el extre-

mo distal; epandria, gonopodos e hypandrium de largo similar.

HEMBRA. Semejante al macho; mystax de 4 pares de fuertes cerdas ama-

rillas, más o meuos uniformemente distribuidas en el borde oral; sin línea

blanca en el borde posterior del tergite 5; ovipositor con 7 pares de espinas

amarillentas.

El nombre choapens:s se refiere a la localidad del typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 11.2 mm ($ 14.0 mm); largo de

ala 7.2 mm (9 9.3 mm); ancho de ala 2.4 mm (9 2.8 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 1% 192. COQUIMBO: 17 (typo) N9 13,

19 N9 12, Choapa, Nov., 1931, F. Ruiz (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 442.

DISCUSION. El £ está engrasado, por lo tanto muchas de las áreas cu-

biertas de micropubescencia plateada o dorada y las líneas en los bordes pos-

teriores de los tergites aparecen rojizas.

Araiopogon cyanogaster (Loew)

(Figs. 168, 170, 171 y 438)

Dasypogon (Saropogon) cyanogaster Loew, 1851, p. 5, Chile.

Aratopogon cyanogaster (Loew). Carrera, 1953, p. 275, El Canelo, Santiago,

y British Guiana; Hull, 1962, p. 282.

Dasypogon p.ctus Philippi, 1865, p. 688, Colchagua.

Saropogon p:ctus (Philippi). Bromley, 1932, p. 266; Stuardo, 1946, p. 82,

TYPO. Z N?9 433, Chile, Eschsch. S., en Zoologisches Museum, Humboldt

Universitat, Berlin, Alemania (v'sto). El Typo de D. pictus Z (falta la cabeza),

está en el Museo Nacional de Historia Natural, Santiago, Chile (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; fémures negros, rojizos en la m'tad apical,

tibia rojiza; mesoiotum bordeado por una línea dorada de micropubescencia;

antenas negras; mystax negro o negro y blanco combinado, reducido al borde

oral; cerdas en las tibias y tarsos rojizas.

REDESCRIPCION DEL TYPO. Cabeza en vista frontal: cara densamen-

te cubierta por micropubescencia dorada; frente negra, pelos frontales negros;

ocellarium negro, ocelos café ciaro; cerdas ocelares largas, negras. Cabeza en

vista lateral (Fig. 168); mystax compuesto por 4-5 filas de fuertes cerdas ne-

gras ubicadas en el borde oral; antenas negras, primer segmento más largo

que el segundo, con pelos negros, los cuales son más cortos en el dorso; se-

gundo segmento con unos pocos pelos cerdosos, negros en la parte ventral, pe-

los cortos biancos en el dorso; tercer segmento una y media vez el largo de

los dos primeros segmentos combinados, microsegmento corto, cilíndrico, cón-

cavo en el ápice y con una corta espina en la cencavidad; barba blanca;

área postocular negra, con una línea de m'cropubescencia plateada en la mi-

tad del borde ocular, vestidura de fuertes pelos negros; cerdas occip'tales ne-

gras, curvadas en el ápice, proboscis negra brillante con pelos negros finos

en la mitad basal, pelos cortos amarillos en eí ápice; palpos maxilares negros,

pelos negros, similares a los pelos de la barba y la proboscis. Protórax negro

brillante con peios negros, más abundantes en el lóbuio protoráxico; cerdas

del collar negras, entremezcladas con pelo fino negro; en el dorso, 2 manchas

de micropubescencia dorada. Mesonotum negro, cub'erto de pelo negro, 2 fi-

las de pelo negro fino, reclinado, en la parte anterior, decreciendo gradual-

mente en largo hacia atrás, un grupo de pelos semejantes detrás de los callos

humerales; una linea de micropubescencia dorada a lo largo de los bordes

laterales, tomando contacto con las manchas doradas del pronotum y la cover-

tura dorada del scutellum, el mesonotum se presenta como rodeado de una

línea dorada; mitad basal del scutellum con densa micropubescencia dorada,

mitad apical desnuda; 10 pares de cerdas dorsocentrales finas y negras; 3 fuer-

tes cerdas dorsocentra“es negras en el lado derecho, 2 rojizas y 1 negra en el

lado izquierdo; 3 cerdas intraalares negras, 1 más déb'l; 2 fuertes cerdas pos-

talares negras; 3 pares de cerdas scutelares negras. Costados del postmesonotum

con una mancha de micropubescencia dorada; una mancha similar en el mese-

pisternum. Alas rojizas oscuras (café rojizas) en el área costal, fumosas en el

centro, hyalinas en el borde posterior, mitad basal de las venas R y M ro-

jiza, el resto café oscuro. Coxas, trocánteres y mitad basal de los fémures, negros

con pelos blancos y algunos pelos negros mezclados, pelos de las coxas y de la

parte ventral de los fémures, más largos, en la parte frontal de las coxas

— ol

“anteriores es más abundante; coóxas con micropubescencia plateada, rala,

más abundante e€n la parte frontal de las coxas anteriores; mitad

distal de los fémures, tibias y tarsos rojizos, cubiertos con pelo dorado

corto, cerdas rojizas; tarsos posteriores cafesosos. Uñas negras. Abdomen negro

brillante con reflejos azules purpúreos, y pelos cortos ralos y negros los que

son más largos en los sternites; tergites 2-4 con una línea blanca en los cos-

tados de los bordes posteriores; primer tergite con 1 cerda negra y 3 blancas

en cada lado. Genitalia (Fig. 171) negra, grande, rotada en 909, y doblada

ventralmente un ángulo de 459 con el abdomen, pelos de la genitalia negros;

epandria y gonopodos de largo similar.

HEMBRA. Semejante al macho; abdomen truncado; 8 pares de pequeñas

espinas rojizas en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 9.3—14.1 mm, promedio 12.2 mm (typo 9.6 mm);

largo de ala de 6.8—9.8 mm, promedio 8.2 mm (typo 7.6 mm); ancho de

ala 2.2-2.9 mm, promedio 2.4 mm (typo 2.4 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 102 Z y 81 9. ACONCAGUA: 27,29 y

l (gen. miss.) 5 mi. W. of la Ligua, Dic. 14, 190 (USNM). ARAUCO: 17

12 Contulmo, Ene. 2, 1902, Schoneamnn S. (BERL); 19 Contulmo, Ene. 7,

1902, Schonemann S. (BERL); 23 Contulmo, Ene. 31, 1906, Schonemann S.

(BERL); 12 Contulmo, Oct. 26, 1903, Schonemann S. (BERL); 129 Con-

tuimo, Schonemann (BERL); 19 Contulmo, Ene. 4, 1906, Schonemann $.

((BERL); 17 Contulmo, Dic. 20, 1904, Sckonemann S. (BERL); 137 Contul-

mo, Mar. 8, 1906, Schonemann S. (BERLD); 13 Lebu, Ene. 21, 1960 (INCO).

BIO—BIO: 1 Candelaria (JIM); 19 Mulchén, Jan., 1926, F. Ruiz

(USNM). CAUTIN: 23 Cholchol, Jan., 1840, D. S. Bullock (INCO); 19

Co. Ñie-ol, Ene., 1963, Fetis (INCO); 13 Galvarino, Feb. 26, 1929 (USNIMD);

13 19 Mision Quepe, Feb. 12, 1933 (INCO); 23 N. of Imperial, 1962,

A. S. Huenuqueo (INCO); 13 Temuco, Mar. 27, 1959, Pflaumer (INCO);

15" Temuco, Feb. 12, 1956, (USNM): LG 9,20 km. E. ¡ol Temuco Ene:

8, 1951, R. Mi. (USNM);. 1.520 .km: ES 0£. Temuco, Ene. 2. 195 ARAS

33 39 Concepción, Dic. 26-28, 1926, F. £ M. Edwards (23 29 USNM;

13 19 (BRIT); 17 Lota, Dic. 22, 1958, J. Ramírez (INCO); 17 San Pedro,

Nov. 7, 1956, Cid (INCO); 23 12 San Pedro, Nov. 3, 1956, Cid (INCO);

209 San Pedro, Nov. 24, 1956, Cid (INCO); 17 San Rosendo, Dic. 1926,

R. £ E. Shannon (USNM). COLCHAGUA: 13 (Typo de D. pictus) Co:cha-

gua, 1861 (JM); 19 Lolol, Colchagua, Feb. 30, 1955, L. E. Peña (BRAS);

¡9 El Peumo, Colchagua, Feb: 1, 1953, “LE. E Benña (BRAS) 5 LINKS:

13 Bulli:eo, Cordillera Parral, D'c. 1-8, 1960, Peña (INCO); 1 19 El

Coigo, Cordillera Curicó, Ene., 1962, Peña (INCO); 1% El Coigo ,Cordillera

Parral, Dic. 20—31, 1959, Peña (INCO); 13 Estero Leiva, Cordillera Parral

Enc. 8—12, 1953, Barros—Peña (INCO); 292 Las Cruces, Cordillera Parral,

Dic. 12, 1960, Peña (INCO); 1% Parral, Puente Curaguilla, Ene. 1899,

Schoneamann (BERL); 19 Romeral, Cordiilera Parral, Nov. 5—10, 1960, Pe-

ña (INCO); 123 109 Villega, Cordillera Parral, Dic. 1-8, 1960, Peña

(INCO). MAULE: 1¿g Constitución, Costa del Maule, Nov. 27, 1953, L.E.

Peña (INCO). MALLECO: 1g Angol, Nov. 30, 1958, J. Perez (INCO);

19 Angol, Nahuelbuta, Nov. 25, 1962, Fetis (INCO); 192 Angol, Dic. 9,

1961, R. Romero (INCO); 19 Angol, Nahuelbuta, Dic. 4, 1959, N. Hernán-

dez (INCO); 1 Angol, Dic. 5, 1961, R. Romero (INCO); 13 Angol, Ce-

rros de Nahuelbuta, 660 m., Oct. 1, 1956, D. S. Buliock (INCO); 1% Angol,

Nov. 17, 1958, Sperberg (INCO); 13 Angol, Cerros de Nahueibuta, Nov. 23,

1935, D. S. Bullock (USNM); 1 Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol, 1200 m.,

Ene, 3,1951, (USNM). ÑUBLE: 23 29 Cobquecura, Dic. 14, 1953, L. E:

Peña (BRAS); 13 (gen. prep.) 40 km. de San Carlos, Dic. 23, 1950, R. £

Mo (USNM); 1 Tregualemu, 300—500m., Dic. 7—12, 1953, L. E. Peña

(BRAS). O'HIGGINS: 19 Rancagua, Ene. 3, 1905, Schonemann S. (BERL);

23 192 Aculeo, Santiago, Nov. 3—7, 1959, Peña (INCO); 13 Codigua, Feb.

ABS E: PE. Peña (BRAS); 3937 395 Eb Canelo “Dic. “21, "195218 BUE

(INCO); 1% El Canelo, Santiago, Dic. 29, 1950, L. E. Peña (INCO); IG

El Canelo, Ene. 1950 (MUNCH); 1g El Cane'o, Santiago, M. Etcheverry

(CEE) 23 42 El Canelo, Nov. Dic., 1954, L. E. Peña (BRAS); 17" El Cas

nelo, Santiago, Ene. 1950 (BRAS); 13 NY 21792 El Canelo, Santiago, D'c.

1949 (BRAS); 23 NO 21794 y NO 21795, 19 N9-:111208 El Canelo, Santiago,

Ene. 1949 (BRAS); 12 N9 111207 El Cane:o, Dic., 1944, Ramírez (BRAS); 1 9

NQ 23466 La Obra, Santiago, Nov., 1951 (BRAS); 1 (con presa) 29 Meli-

pilla ,Eeb. 18, 1941, P. A. Berry (29 .USNM; 15. INGO);:1'9 Peñalolén;

Feb. 3, 1953, Etcheverry (CEE); 2% Quilicura, Santiago, M. Etcheverry

(CEE). TALCA: 19. .N9 10 Las Mercedes, Ene. 16, 1937,,F. Ruiz (USNM).

VALPARAISO: 1gZ 5 mi. N. of Concón, Dic. 16, 1950, R. £ M. (USNM);

GS 10m. N. of Concón, Dic: 16,* 1950, -K3.2 M5 (USNM);. 1:2:-N0/36

Limache, Ene. 31, 1920, A. Faz (USNM); 19 Limache, Ene. 31, 1920 (CEE);

19 Valparaíso, A. Faz (CORN); 13 Valparaíso, Dr. Reed (USNM); 1G

Villa Alemana, Mar. 1960, Madariaga (INCO). Localidad incierta: 23 (gen.

prep.) Colli, Ene. 6, 1962, E. Salgado (INCO). Sim localidad ni fecha: 13

NQ 433 (Typo D. Cyanogaster), Chi-e, Eschsch S. (BERL).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 438.

PRESA: Hyimenoptera, Halictus sp.

DISCUSION. Esta especie varía en tamaño y color, pero es fácilmente re-

conocible por el co-or de las patas y la línea dorada que rodea el mesonotum.

El mystax tiene a veces algunos pelos amarillos en el centro; las líneas blan-

Ec pda

cas de los tergites 2-4 son poco destacadas en algunos especimenes; la línea

dorada del mesonotum y scutellum se destaca poco en los especímenes engra-

sados; el área negra de los fémures varía en tamaño, desde un—cuarto basal

hasta tres—cuartos basal, pero el ápice de los fémures es siempre rojizo.

Araiopogon fraternus (B“got) n. comb.

(Figs. 166, 167, y 432)

Saropogon fraternum Bigot, 1878, p. 414, Chile; Bromley, 1932, p. 2€6;

Stuardo, 1946, p. 82.

Saropogon fraternus Bigot. Hull, 1962, p. 278.

TYPO: Perdido. Un Neotypo es designado, éste es un Y de Hda. Illapel,

Coquimbo, Nov. 21—24, 1959, L. Peña; este ejemplar está depositado en el

Departamento de Zoo.ogía de la Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo y pelos del cuerpo negros; fémures medios y ante-

riores negros, tarsos en su mayor parte negros; fémures posteriores y tibias

roj z=s; mystax de 3 pares de cerdas negras en los Y y 6 pares en las Q, estas

cerdas son largas y fuertes; antenas negras; alas café oscuras.

DESCRIPCION DEL NEOTYFO (¿G). Cabeza en vista frontal: cara

negra brillante; Írente con rala micropubescencia plateada; pelos frontales ne-

gros; ocellarium más bien desnudo, ocelos café rojizos; cerdas ocelares blan-

cas; mystax de 6 cerdas largas, fuertes y negras, ubicadas en grupos de 3 a

cada lado del borde oral. Cabeza en vista lateral (Fig. 167): antena negra,

primero y segundo segmento con abundante pelo negro grueso, tercer segmen-

to una y media vez el largo de los dos primeros segmentos combinados, ate-

nuado apicalmente en la mitad distal, con 5 pelos negros cortos, proclinados,

en el dorso, el m'crosegmento es cilíndrico con una corta espina en el extre-

mo; barba escasa, negra; área postocuiar negra brillante con micropubescencia

plateada, rala, y algunos pelos cortos negros, ralos; cerdas occipitales negras,

semejantes a ¡as de la vestidura postocular; proboscis negra con pelos largos

blancos y finos en la mitad basoventral y pelos cortos finos amarillos en el

ápice; paipos maxilares negros, primer segmento con pelos largos finos en el

lado ventral, segundo segmento con pelos negros cerdosos, gruesos, en todo

el segmento. Protorax negro brillante con finos pe.os negros, los cuales son

más abundantes en el lóbulo protoráxico; cerdas del collar negras, entremezcla-

das con pelos finos negros. Pleura toráxica negra bri:lante, desnuda, con refle-

jos azulados; cerdas mesepimerales negras. Mesonotum negro brillante, cubierto

con pelos cortos, ralos en el dorso; 2 líneas paralelas más brillantes que el

resto; callos humerales cubiertos de micropubescencia plateada que se extiende

hasta ei pronotum; una mancha pequeña de micropubescencia plateada a cada

PTE

lado, inmediatamente detrás de la sutura transversa y en el lado posterior del

callo posterior; scutellum brillante, negro; 3 cerdas notopleurales negras; 2 cer-

das intraalares largas y negras; 2 largas cerdas postalares negras; 4 pares de

cerdas dorsocentrales localizadas posteriormente a la sutura transversa, varios

pelos largos, negros, entre las cerdas dorsocentrales; 2 pares de cerdas scutella-

res negras. Costados del postmesonotum negro, con micropubescencia plateada.

Alas café oscuro con refiejos azulados purpúreos, más oscuros hacia la base,

con una mancha hyalina en la bifurcación de M. Coxas y tracánteres negros,

con pelos negros, abundante micropubescencia plateada y pelos más abundantes

en el lado frontal de las coxas anteriores; fémures anteriores negros; fémures

medianos negros en la mitad basal, rojizos en la mitad apical; fémures poste-

riores rojzos, con el sexto basal negro; fémures cubiertos de pelo negro corto,

más largo en el lado ventral en los fémures medios y anteriores; tibias rojizas

con pelo ralo blanco, tibias anteriores y medias con pelo negro corto en el

lado ventral, cerdas negras; espina de la tibia anterior negra, parte inferior de

la tibia, bajo la espina, café oscura; tarsos anteriores y med'os negros, pos-

teriores café; pelos y cerdas de los tarsos negros. Uñas negras. Abdomen negro

brillante, cubierto de pequeños pelos negros, ralos, aprensados, pelos más lar-

gos en los sternites y en los costados del primer tergite ei cual también posee

3 cerdas negras en cada lado. Genitalia del mismo color que ei abdomen,

rotada en 909; epandria cortos; gonopodos más cortos que los epandria; borde

posterior del hypandrium recto; pelos de la genitalia negros; funda del pene

como en la Fig. 166.

HEMBRA. Semejante al macho; mystax de 4-6 pares de cerdas negras

en el margen oral; ovipositor con 9 pares de espinas aplastadas en el ápice.

MEDIDAS. Largo total 15.0—23.0 mm, promedio 19.2 mm (neotypo 19.5

mm); largo de ala 11.2—15.0 mm, promedio 13.0 mm (neotypo 11.2 mm);

ancho de ala 3.8—4.1 mm, promedio 3.0 mm (neotypo 3.9 mm).

MATERIAL EXAMINADO. TS y 392. ARAUCO: 19 Contulmo, Scho-

nemann S. (BERE). COQUIMBO: 12 (gen. prep.) La Capilla, Hda. llapel,

Nov. 21, 1959, Peña (INCO); 1¿G (gen. prep.) Hda. Illapel, 600 m, Nov.

1-6, 1954, L. E. Peña (INCO); 4g (neotypo) Hda. Illapel, 00 m, Nov.

21—24, 1959 (2 INCO, 2 OTT). SANTIAGO: 17 El Cane.o, Ene. 28, 1956,

L. Peña (INCO); 192 Quebrada el Peumo, Cajón del Maipo, Feb. 1956,

Dirings (BRAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 432.

DISCUSION. Algunos ejemplares poseen reflejos azulados o purpúreos so-

bre los tergites, otros poseen los tergites solamente negros. El área de color

negro en los fémures med'os y posteriores sufre alguna variación: algunos

78 2

ejemplares poseen los fémures medios con el tercio basal negro y los fémures

posteriores completamente roj'zos; las tibias son en algunos casos oscuras en

el ápice, especialmente las tibias medianas.

Aratopogon gay: (Macquart)

(Fes. PIO) "IG9HUTZA YA EDO)

Dasypogon gay Macquart, 1838, p. 37, Chile; Blanchard, 1852, p. 365; 1854,

Pl. 3, figs. 1 a—d, Coquimbo; Walker 1854, p. 434; Brethes, 1918, p. 49,

La Ligua.

Saropogon gay: (Macqaurt). Williston 1891 p. 74; Kertesz 1909, p. 1838;

Stuardo, 1946, p. 82.

Araiopogon gayi (Macquart). Carrera, 1949, p. 123, San Bernardo; 1953, p.

275, La Higuera, El Caneio;: Hull 1962, p. 282, fig. /59), 157. LIO 0%

1853, y 1858.

Dasypogon (Saropogon) chalybewentris Loew, 1851, p. 5, Chile.

Saropogon hyacinthinum Bigot, 1878, p. 413; Stuardo, 1946, p. 82.

COTYPOS: 1 19 en Museum National d'Histoire Naturelle, Paris,

Francia (no visto). Typo de $. hyacinthinum Bigot en el Hope Department

of Entomology, Oxford University, England (visto). Typo Z de D. chalybe:-

ventris Loew en Zoo'ogisches Museum, Humboldt Universitat, Berlin, Germany

(visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro, desnudo, con refiejos azules, púrpuras o ver-

dosos; fémures negros, t:bias en su mayor parte rojizas; alas café oscuro, más

oscuras en la base, con reflejos azulados; mystax de 4 pares de cerdas negras.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y frente negra brillante con mi-

cropubescencia plateada a lo largo dei borde de los ojos y en la parte infe-

rior de la cara; pelos frontales corrientemente negros, algunas veces blanque-

cinos; ocellarium negro, oce:os café rojizos; cerdas ocelares negras. Cabeza en

vista lateral; cara de aspecto blanquisco; antenas negras, primero y seguncCo

segmento con pelos negros; tercer segmento una y media vez el largo de los

dos primeros segmentos combinados, atenuado en el ápice, con 4-5 cerdas

cortas en la mitad dorsobasal y con un m'crosegmento cilíndrico que lleva

una corta espina en el ápice; barba corrientemente negra; área postocular

negra con micropubescencia plateada a lo largo de los bordes oculares, vesti-

dura de pe-os negros; cerdas occ'pitales negras, gruesas, proclinadas en el ápice;

proboscis negra brillante con pelos largos negros en la mitad basoventral y con

corto pelo amarillo en el ápice; palpos maxilares negros con pelos cerdosos

negros. Protórax negro brillante con pelos negros, más abundantes en el lóbu-

lo protoráxico; cerdas del collar negras, entremezcladas con pelos finos tam-

y ER

bién negros. Pleura toráccica negra brillante, desnuda; cerdas mesepimerales

negras. Mesonotum negro con pelos cortos negros. ralos; micropubescencia pla-

teada escasa frente a los callos humerales y detrás de los callos posteriores,

generalmente poco visib:e; scutellum semejante en color al notun; 3 pares de

cerdas dorsocentrales negras; 3 cerdas notopleurales negras; 2 cerdas intraala-

res negras; 2 cerdas postalares negras; 1 o 2 pares de cerdas scutellares, co-

rrientemente más débiles que las del mesonotum. Costados del postmesonotum

negro con micropubescencia plateada. Alas café oscuro, corrientemente más

oscuras en la base, con claros reflejos púrpura, venas café oscuro. Coxas, tro-

cánteres y fémures negros; coxas con algunos pelos largos negros, los cuales

son más abundantes en el lado frontal de las coxas anteriores; fémures con

pelos cortos negros, algunos más largos en el lado ventral, sin cerdas destaca-

das; tibias en su mayor parte rojizas, algunos ejemplares con la base o el

ápice negro, cerdas negras; tarsos oscuros, cerdas negras; espina de las tibias

anteriores negra. Uñas negras. Abdomen negro brillante con reflejos azules,

verdosos o púrpura, cubierto con pelos negros, cortos, ralos los pelos de los

sternites más largos; costados del primer tergite con algunos pelos largos y

2-3 cerdas negras. Genitalia (Fig. 165) pequeña, del mismo color que el

abdomen; epandria, gonopodos e hypandrium de largo similar; pelos de la ge-

nita-ia largos, cerdosos, negros; funda del pene como se isustra en la Fig. 169.

HEMBRA. Semejante al macho; 7 pares de espinas negras en el oviposi-

tor.

MEDIDAS. Largo total 12.5—18.5 mm, promedio 13.5 mm; largo de ala

9.2-13.5 mm, promedio 11.0 mm; ancho de ala 3.0—4 mm, promedio 3.6 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 32,3 259 y l (gen. miss). ACONCAGUA:

19 Piscicultura, Nov. 16—30, 1958, G. García (INCO); 23 Río Blanco, Dic.

5—8, 1961, Peña (INCO); 17 Río Blanco, Dic. 21, 1917, P. Herbst (INCO).

ARAUCO: 1 Contulmo, Sept. 9, 1903, Schonemann (BERL). ATACAMA:

13 Q. Algodones, Carrizal Bajo, Atacama, Oct. 18, 1957, L. E. Peña (INCO).

COQUIMBO: 1% 22 Coquimbo, Nov. 2-3, 1961, Peña (INCO); 17 El Pan-

gue, Vicuña, Nov. 3—4, 1961, L. E. Peña (INCO); 19 Háda. lllapel, 00 m,

Coquimbo, Nov. 20, 1961, L. Peña (OTT); 1g E. P. Reed (CAS). 23 15

mi. S. of Los Vilos, Dic. 13, 1950, R. £ M. (INCO, CAS); 19 Manquehue,

Majada Blanca, Coquimbo, Nov. 13—15, 1961, L. E. Peña (INCO); 29 Pai-

guano, Elqui, Nov., Dr. Gajardo (PAR); 1% Puente Morrillos, Hurtado,

nov. 21, 1943, E. P. Reed (CAS); 1 Río Los Choros, 1750 m, Coquimbo,

Oct. 30, 1961, L. E. Peña (OTT); 1 Socos, Coquimbo, Oct. 27, 1961, L. Pe-

ña (INCO); 1 Valle Elqui, Coquimbo, Oct. 2, 1961, L. E. Peña (INCO);

19 Vicuña -Pangue, 900 m., Coquimbo, Nov. 2-3 1961, L. E. Peña (INCO).

O'HIGGINS: 29 23 km. N. of Rancagua, Dic. 21. 1950, R. £ M. (INCO).

SANTIAGO: 12% Aculeo, Santiago, Nov. 3—7, 1959, Peña (INCO); 1%Z

NO 21793 El Canelo, Dic. 1948, Gutiérrez (INCO); 49 El Canelo, Santiago,

Nov. 10, 1962, Millán, (INCO); 23 192 (gen. prep.) El Peumo, Río Maipo,

Santiago, Nov. 1949, L. E. Peña (INCO); 1 Renca, Feb. 17, 1950 (CEE);

13 NO 111186 San Bernardo, Oct., 1944 (INCO); 23 19 Km. W. of Santia-

go, Dic. 19, 1950, R. £ M. (CAS); 1gZ N% 12 Santiago (USNM); 1 N9 7673

Santiago, Pueima (BERL). TALCA: 29 NQ 8 y NO 9 Las Mercedes, Ene. 14,

1936, 4F. ¡Ruiz (INCO) 10 +22 m1. N.jof. ¡Talca Dies 22, 1950) Become

(CAS). MAEPARAISO:.+.L 9. Galeu, Ene. .£, 119644. E.. Peña (INCO)A7

Quilpué, Feb. 1957, Etcheverry (CEE); 1gGZ Valparaíso, A. Faz (CORN);

23 29 Valparaiso, A. Faz (USNM); 19 Zorras, Ene. 17, 1887, E. C. Reed

(INCO); Sin localidad ni fecha: 1 (gen. miss.) NO 62216, Agos., 1923, Chile

(BRAS); 13 (typo de D. chalybe/ventris) NO 434, Chile, Scholtz (BERL); 1G

Chile, Schiltz (BERL); 12 NQ 4586, Chile, Schultz S. (BERL); 192 N9 19, Chi-

le, Dr. Reed (USNM): 1% 1.9. Chile, E..C. Reed (USNM);..1. + (typosde

S. hyacinthinum) NO 61 en Coll. Bigot, Type Dip. 177 (OXF); (1 (gen. miss.).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 453.

DISCUSION. El color de los pelos de la barba y la proboscis varía entre

el blanco y el negro; el color de las tibias es generalmente rojzo en toda su

extensión, sin embargo algunos ejemp“ares poseen la base y el ápice negro,

especiaimente las tibias medianas y anteriores; unos pocos ejemplares estudia-

dos presentan las tibias anteriores y medianas café oscuro; las alas son café

oscuras en la mayoría de los ejemplares, pero en algunos pocos éstas son café

claro pero siempre oscuras en la parte basal; algunos especímenes tienen una

mancha hya:ina en la b'furcación de M; los pelos de las coxas, barba y base

de la costa son a menudo blancos.

Aratopogon perniger (Schiner) n. comb.

Saropogon perniger Schiner, 1868, p. 166, Chie; Stuardo, 1946, p. 82; Hull,

1962, p. 278.

TYPO: G, Chile, Novara, en Naturhistorisches Museum, Wien, Austria

(visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo, fémures y tarsos negros; tibias café oscuro; alas

uniformemente coloreadas de café oscuro; cara y frente negra, con micropu-

bescencia plateada rala; antenas negras, pleuras torácc:cas y abdomen con re-

flejos azules; pelos y cerdas negras.

REDESCRIPCION DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal: cara y

frente negra, con micropubescencia rala, gris, especialmente en los bordes ocu-

lares y en el borde oral; pelos frontales largos, negros; ocellarium con vesti-

dura semejante a la frente, ocelos café claro; cerdas ocelares negras, de largo

semejante a los pelos frontales. Cabeza en vista lateral: mystax de 4 pares de

gruesas y largas cerdas negras, 4 cerdas a cada lado del borde oral, sin cer-

das en el centro; antenas negras (tercer segmento antenal falta en el ejem-

plar), primer segmento con pelos negros; barba de pelos negros esparcidos;

área postocular semejante en color a la frente, con pelos gruesos cortos y ne-

gros; cerdas occipitales abundantes, negras; proboscis negra brillante con pe-

los largos, ralos, negros, en la mitad basoventral, pelos cortos amarillos en el

ápice; palpos maxilares negros con gruesos pelos negros. Protórax negro, con

pe-os negros, los cuales son más abundantes en el lóbulo protoráccico; cerdas

del collar largas, gruesas, negras, entremezcladas con pelos finos negros de lar-

go semejante. Pleuras toráccicas negras briilantes; cerdas mesepimera“es negras,

de diferentes grosores y largos. Mesonotum negro, cailos humerales con visible

micropubescencia gris, una mancha gris sobre la base de las alas; vestidura

de mesonotum compuesta por 3 filas dobles o triples de pelos cortos y negros

sobre el dorso, posterior a los callos humerales y a lo largo de los bordes,

en los callos humerales hay unos pocos pelos negros más gruesos; scutellum

negro; 3 pares de cerdas dorsocentrales negras ubicadas detrás de la sutura

transversa; 2 cerdas notop-eurales, largas, negras y gruesas; 2 largas y gruesas

cerdas intraalares negras; 2 cerdas postalares largas, negras; 1 par de cerdas

scutelares largas y negras. Costados del postmesonotum negro, desnudo. Alas

café oscuras, más oscuras cerca del área costal, venas café oscuro. Coxas,

trocánteres y fémures negros con pelo negro, corto en el lado dorsal y más

largo en la parte ventral, más gruesos y más abundantes en el lado frontal

de las coxas anter'ores, sin cerdas en los fémures; tibias y tarsos café oscuros,

casi megros, con pelos y cerdas cortos y negros; espina de las tibias anterio-

res negras. Uñas negras. Abdomen negro o con reflejos azulados, cuberto de

pelos ralos, cortos y negros, aprensados, los cuales son más largos en los costados

del primer tergite, en los sternites y en la genitalia. Genitalia del mismo co-

lor que el abdomen, rotada en 759; epandria y gonopodos de largo semejante,

hypandrium mucho más corto.

HEMBRA. Desconocida.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 13.2 mm; largo del ala 10.9 mm; an-

cho de ala 3.4 mm.

MATERIAL EXAMINADO: 1¿G (typo) Chile, Alte Sammlung, Novara,

en Naturh'storisches Museum, Wien, Austria.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Desconocida.

DISCUSION. Sólo se conoce el Typo.

377 E

CREOLESTES Full

Creolestes. Hull, 1962, p. 150 (como un subgénero de Bathypogon Loew).

TYPO DEL GENERO: Clavator nigribarbis Philippi 1865, designado por

Hull, 1962 como Bathypogon hirtuosus Schíner typo del subgénero Creolestes.

Creolestes es elevado en este trabajo a la categoría de género.

Cabeza en vista frontal un—tercio más ancha que alta; vertex moderada-

mente hundido; ocellarium de tamaño moderado. Cabeza en vista lateral: área

postocular un—séptimo del ancho de los ojos; giba facial moderada a grande,

ocupando la mitad de la cara; cerdas occipitales débiles, piliformes, pilos:dad

abundante. Antenas con el tercer segmento fus:forme, llevando un microseg-

mento suavemente ahusado en el extremo, con una espina terminal. Mystax

de cerdas largas y abundantes ubicadas sobre toda la giba facial excepto en

los costados. Mesonotum con las líneas centrales y las manchas laterales distin-

tas. Vestidura del mesonotum de pelos ralos de largo moderado a corto; pelos

dorsocentrales distintos; 2-4 pares de cerdas scutelares largas. Costados del

postmesonotum con micropubescencia aprensada, sin pelos. Ceida marginal

abierta; cuarta celda posterior cerrada y pedunculada; R, termina antes del

ápice del ala; R, termina detrás del ápice del ala; celda anal ligeramente

abierta, a menudo casi cerrada en el borde alar, nunca pedicelada; M, y m

corrientemente forman un ángulo de 1800, rara vez de 170%. Espina de las

tibias anteriores ausente. Abdomen largo, preferentemente cilíndrico en los

machos, ahusado en las hembras. Alas cortas, corrientemente no alcanzan el

ápice del ala. Genitalia de los machos de tamaño variable, rotada entre 909

y 1809. Hypandrium en forma de forceps, corrientemente curvado en el extre-

mo y d'rigido dorsalmente. Gonopodos ligeramente alargados. Hembras con

la genitalia truncada, acanthophorites con 5-6 pares de espinas.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 5 especies.

Este género está próximamente relacionado con Bathypogon Loew, del

cual puede ser separado por la forma suavemente sigmoidea de R,, la cual

alcanza el borde del ala cerca del ápice, la ausencia de cerdas gruesas en el

occipucio, la presencia de cerdas gruesas en el primero y segundo antenal, y

la rotación de 900 a 1800 de la genitalia de los machos. En Bathypogon, R,

se curva fuertemente hacia arriba y alcanza el borde del ala mucho antes del

ápice, la celda anal es cerrada y pedicelada, posee gruesas cerdas occipitales,

no posee gruesas cerdas en los primeros y segundos segmentos antenales, y la

genita.ia de los machos nunca se presenta rotada. El grado de rotación de la

genitalia en Creolestes varía con la edad del ejemplar; en ejemplares recién

emergidos, la rotación es cercana a los 909, m'entras que en ejemplares más

viejos la rotación se aproxima a los 1809,

o»

CLAVE. PARA LAS ESPECIES DE CREOLESTES

Mystax y pelos frontales amarillos O blancos ..o..ommccnn........... 2

Pelos del mystax negros o entremezclados negros y blancos,

pelos etrontalest la mayoria: TEBIOS io .adotccoacon oi dona mb vn ios adi coc caca 4

Fémures negros; cerdas de los fémures y tibias negras; tibias

anteriores y medianas con una o dos cerdas cafés ..................

C. parvum (Bigot)

Fémures negros en la parte externa, rojizos en el interior;

¡EMUEES iy DIAS” com cercas DÍandask tras gedz e ats 3

Largo total menos de 14 mm; giba facial desde una vista

lateral, negra con micropubescencia blanca; hypandrium ter-

mina en un proceso puntiagudo corto (Fig. 50) ..................

C. rubricornis (Phil.)

Largo total mayor de 15 mm; giba facial desde una vista la-

teral rojiza, con micropubescencia blanca; hypandrium casi

manco (Eo) a a: C. rufescens (Phil.)

Sin espinas en el cuarto basoventral de los fémures posteriores

(Fig. 58); machos con el tercio o la mitad basal del ala

blanca VEA AAN EEN. Cskeissert (6. eb.)

Cuarto basoventral de los fémures posteriores con espinas

(Fig. 56); machos con alas uniformemente coloreadas ..........

Creolestes heisseri (Carrera * Papavero) n. comb.

(Fig. 58, 470)

Alyssomyia keisseri Carrera £* Papavero, 1965, p. 52, Panguipulli; Las tran-

cas, Ñuble, Chile.

TYPO: G, Panguipulli, Chile, depositado en el Departamento de Zoolo-

gía, Secretaría de Agrícultura, Sao Paulo, Brasil (visto).

DIAGNOSIS. Especie negra con áreas rojizas; mystax con pelos negros y

blancos entremezclados; tercer segmento antenal rojizo; fémures negros en la

parte externa, rojizos en el interior; alas con el tercio o la mitad basal

blanco en los machos, uniformemente coloreadas en las hembras; genitalia de

los machos roj'za; fémures posteriores sin cerdas en el tercio basal del área

lateroventral.

MACHO. Cabeza en vista frontal; cara cubierta por densa micropubescen-

cia dorada; frente negra con pelos frontales negros; ocellarium negro, ocelos

oscuros; cerdas ocelares negras. Cabezas en vista lateral: giba facial rojiza con

micropubescencia dorada en el borde de los ojos; mystax con pelos blancos

y negros entremezclados; antena rojiza, primer segmento corrientemente rojizo

café, algunas veces café oscuro, con abundante pe:o negro, algunos ejemplares,

incluyendo el typo, poseen unos pocos pelos blancos entremezclados con los

pelos negros; segundo segmento corrientemente rojizo con pelos negros; tercer

segmento siempre rojizo con el quinto basal oscuro, llevando un microsegmen-

to semi cilíndrico oscuro, con una corta espina en el ápice; barba blanca;

pelos occipitales negros, fuertemente proclinados, se continúan en una simple

fila de pelos negros débiles a lo largo del borde posterior de los ojos; cover-

tura del área postocular de pelos blancos; proboscis negra brillante con pelos

largos blancos en la mitad basal ventral y pelos cortos blancos en el ápice;

palpos maxilares café oscuros con pelos negros. Protorax negro con micropu-

bescencia plateada y pezos blancos débiles ralos, los que son más densos en

el lóbulo protoráccico; colar cubierto por pelos lanosos, la mayoría negros.

Pleura toráccica en su mayor parte con grandes áreas negras, con densa mi-

cropubescencia plateada y pelos ralos débives y lanosos; cerdas mesepimerales

amarillas, 1—7 cerdas negras pueden estar presentes entre ellas (7 en el typo).

Mesonotum rojizo con micropubescencia plateada y pelos ralos negros; bandas

centrales y manchas laterales negras, las bandas centrales corrientemente muy

juntas formando una sola banda ancha negra; callos posteriores y humera!es

rojízos con unos pocos pelos blancos débiles; disco del scutello negro con

micropubescencia plateada en el borde anterior; 6-9 cerdas dorsocentrales

negras; 1-2 cerdas intraalares negras; 34 cerdas postalares negras; 2-3 cerdas

scutelares negras; disco del scutelium con unos pocos pelos débiies, ralos y ne-

gros. Costados del postmesonotum rojizo con micropubescencia plateada. Alas

cafés con la mitad basal blanca, el blanco es más denso hacia el área anal.

Coxas rojizas con grandes áreas negras y unos pocos pelos blancos, las coxas

anteriores en su mayor parte negras brillantes con pelos largos blancos en el

costado anterior; fémures negros en el exterior, rojizos en el interior, con

pelo largo blanco ralo; fémures anteriores con pelos negros en el costado dor-

sal; 1-2 cerdas negras en los fémures anter/ores, 4-5 cerdas en los fémures

medianos y 12—16 cerdas negras en los fémures posteriores, uma hilera de

2-4 cerdas en el borde lateroventral pero sin extenderse más allá del cuarto

basal del fémur (Fig. 58); tibias y tarsos café rojizos, más oscuros en el exte-

rior, cubiertos de pelo blanco ralo y cerdas negras; uñas negras, en el quinto

basal rojizas. Tergites abdominales negros, bordes lateraies de los primeros 4

tergites rojizos, cubierto de pelos cortos, aprensados, entremezclados blancos y

negros; stern:tes rojizos, borde posterior café oscuro brillante o negro interrum-

pido por una mancha plateada en la línea media. Genitalia rojiza, café oscu-

PES

ra o negra (typo rojiza), cubierta por pelos negros o negros y blancos entre-

mezclados.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor café oscuro o negro, cubierto

por pelos ralos blancos, 5 pares de espinas negras en los acanthophorites; alas

café, coloreadas uniformemente.

MEDIDAS. Largo total 9.0—14.0 mm, promedio 12.0 mm (typo 9.5 mm);

largo de ala 6.2-8.2 mm, promedio 8.0 mm (typo 6.2 mm); ancho de ala

1.8—-2.7 mm, promedio 2.2 mm (typo 2.0 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 253 y 142. ARAUCO: 17 Alto de Caicu-

pil, 1100 m, Ene. 12, 1954, L. E. Peña (INCO); 1g Alto de Nahuelbuta,

11460 m. Arauco - Malleco, Ene. 16, 1954, L. E. Peña (OT'T); 19 Contulmo,

Feb. 2, 1904, Schonemann S. (BERL); 13 Tres Pinos, Feb. 18, 1959, F. Gon-

zález (INCO). CAUTIN: 13% Laguna Quepe, Llaima, Dic. 24, 1962, O. Fetis

(INGCO); 13 “Temuco, Ene. /1908,-P. Herbst (GAS); 1 9. Temuco, Feb: 12;

1936 (USNM); 12 Toltén, Ene. 1955, H. Toro (CEE); 19 Villarrica, Feb.

12, 1964, Cekalovic (BRAS); 19 Villarrica, Feb. 13, 1964, Cekalovic (INCO);

iO NN: E of Pucón, Ene. 12, 195, RK:> M. (INCO)7 17 (12 km.éN:

E. of Pucón, 380 m., Ene. 12, 1951, R. £% M. (CAS); 43 10 mi. N. E. of Pu-

cón, Ene. 12, 1951, R. £% M. (CAS). CONCEPCION: 12 Lota, Coelemu,

Abril 9, 1961, Orellana (INCO). LINARES: 1g Bader von [baños de] Lon-

gaví, Parral, Schonemann S. (BERL). LLANQUIHUE: 17 8 mi. W. of

Pt. Varas, Ene. 16, 1951, R. £% M. (INCO); 1 Frutillar, Feb. 10, 1951,, ]J.

Herrera (CEE); 17 Frutillar, Feb. 1, 1951, J. Herrera (CEE); 19 Lepihue,

sea coast W. of Pto. Montt, Ene. 21, 1951, R. £ M. (CAS). MALLECO: 17

Angol, Dic. 31, 1929 (USNM); 1G% Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol,

1200 m., Ene. 2, 1951, R. £ M. (CAS). ÑUBLE: 13 Baquedano, Yungay, Feb.

6—7, 1957, Artigas (INCO); 192 Las Trancas, Ñuble, 1260 m., Feb., 1956,

L. E. Peña (BRAS); 13 (paratypo) Las Trancas, Ñuble, 1260 m, Feb., 1955

L. E. Peña (BRAS). O'HIGGINS: 19 Rancagua, Nov. 13, 1901, Schonemann

AN (BERE) OSORNO: 19 Crucero, Ene. 17, 1965, Matthei (MICH); 13G

Pto. Octay, Ene. 15, 1957, Oherens (INCO); 19 Pto. Octay, Ene. 19, 1956,

E. O. B. (INCO); 19 30 km. W. of Purranque, Osorno, Ene., 1951, R.

£ M. (CAS). VALDIVIA: 19 N9 21.601, Panguipulli, Ene., 1945 (BRAS);

1 (typo) NO 21690, Panguipulli, Ene., 1945 (BRAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 470.

DISCUSION. La hembra de esta especie, que se describe aquí por prime-

ra vez, carece de la más relevante de las características de los machos, cual

es la base de las alas blancas, más intensa en la porción anal. Las hembras

de C. keisseri son similares a las hembras de C. nigribarbis, y pueden ser se-

paradas sólo por la distribución de las cerdas en los fémures posteriores (ver

discusión en C. nigribarbis).

pon UE

Creolestes negribarbis (Philippi) n. comb.

(Biss 0400 007 10/10 UA Ae),

Clavator nigribarbis Philippi, 1865, p. 699—700, fig. 2, Illapel.

Hypenetes nigribarbis (Philppi). Williston, 1891, p. 71; Kertesz, 1909, p. 74;

Bromley, 1932. p..26% Hull 1962 ¿p-(1D%

Pritchardia nigribarbis (Philpp1). Stuardo, 1946, p. 80.

Alyssomyia nigribarbis (Philippi). Carrera £ Papavero, 1965, p. 51-52, Las

Trancas, Ñuble, Ch'le; El Canelo, Santiago; Panguipulli, Coquimbo.

Bathypogon hirtuosus Schiner, 1868, p. 160, Chile; Stuardo, 1946, p. 81; Hull,

1962, p. 150—151, figs. 512, 1019 y 1028 (subgénero Creolestes), Chile.

TYPO: Q, sin localidad ni fecha, depositado en el Museo Nacional de

Historia Natural, Santiago, Chile (visto); cotypos (1Z 19) de Bathypogon

hirtuosus Schiner, en Naturhistor'sches, Wien, Austria (visto).

DIAGNOSIS. Especie negra con áreas negras; mystax de pelos blancos y

negros entremezclados; tercer segmento antenal roj:izo; fémures negros en el

exterior y rojizos en el inter'or; tibias en su mayor parte rojizas; tergites abdo-

minales negros con fina m'cropubescencia gris; stern'tes en su mayor parte ro-

jizos; fémures posteriores con abundante cerdas gruesas negras, una completa

hilera de cerca de 10 cerdas en el costado lateroventral externo dei fémur pos-

terzor; alas uniformemente café en ambos sexos.

REDESCRIPCION DEL TYPO (9). Cabeza en vista frontal: cara cu-

bierta por densa micropubescencia dorada, excepto bajo las antenas; frente

negra con pelos negros; ocellarium negro, ocelos oscuros; cerdas ocelares ne-

gras. Cabeza en vista lateral (Fig. 54): giba facial rojiza con micropubescen-

cia dorada en la parte superior de los costados, en la parte frontal y en el

borde oral; mystax en su mayor parte negro, con unos pocos pelos blancos

entremezciados y un grupo de cerdas blancas en el borde oral. Antenas roji-

Zas, primer segmento con pelo blanco ralo, segundo segmento con 3-4 cerdas

negras cortas en el dorso, 1 larga y gruesa y 2 largas pero más delgadas en

el lado ventral, tercer segmento rojizo, con el cuarto basal negro, lleva un

microsegmento cilíndrico negro, que tiene en el ápice una espina corta; barba

banca; pe-os occipitales fuertemente proclinados, negros, continuados en una

fla a lo largo del borde posterior de los ojos; área postocular con pelo blanco

disperso; proboscis negra brillante con pelo largo blanco en la mitad basoven-

tral, un grupo de pelos negros de tamaño mediano en el centro de la mitad

basoventral, pelos blancos cortos en el ápice; palpos maxilares café oscuros

con pelos negros largos. Protórax negro con micropubescencia plateada y pe-

los débiles blancos dispersos, collar con pe.os blancos largos, los cuales se en-

tremezclan con pelos negros en la parte dorsal; lóbulo protoráccico con pelo

delgado, blanco y largo. Pleura toráccica en su mayor parte negra, con áreas

rojizas, cubierta de micropubescencia plateada rala y unos pocos pelos largos,

delgados, blancos; cerdas mesepímerales amarillas entremezcladas con 4 cerdas

gruesas negras. Mesonotum en su mayor parte café rojizo con micropubescen-

cia plateada y dorada, excepto sobre la oscura banda central y las manchas

laterales; callos humerales rojizos con micropubescencia plateada y pelos blan-

cos débiles, en el callo izquierdo hay una cerda negra; vestidura del mesono-

tum de pelos negros cortos ralos; callos posteriores semejantes a los callos

humerales pero con 2 largas cerdas postalares negras; 6 cerdas postalares ne-

gras; 3 largas cerdas notopleurales negras; 1 cerda intraalar gruesa y 1 cerda

más débil, ambas negras; cerdas scutelares perdidas en el ejemplar typo (e

otros ejemplares: 4 pares de cerdas gruesas, negras, con algunos pocos pelos

negros entremedio); disco del scutellum con pelos delgados, blancos, ralos.

Costados del postmesonotum rojizo y negro, cubierto de micropubescencia pla-

teada. Alas (Fig. 59) débilmente café, venas del área costal café rojizas, el

resto negras. Coxas rojizas y negras con unos pocos pelos blancos, coxas an-

teriores con abundantes pelos en la parte frontal; fémures negros en la parte

externa, rojizos en el interior, cubiertos de largos pelos blancos ralos, en los

fémures anteriores existen algunos pelos negros en la parte dorsal; fémures

anteriores con 2 cerdas negras cerca del ápice; fémures medianos con 6 cer-

das negras, alrededor del ápice; fémures posteriores con 20—23 cerdas negras,

una línea de 8 cerdas a lo largo de ia parte lateroventral externa, extend'én-

dose a lo largo de todo el fémur (Fig. 56); tibias y tarsos rojizos, cubiertos

con pelos blancos ralos y con gruesas cerdas negras; uñas (Fig. 62) negras,

rojizas en la base. Abdomen en su mayor parte negro; tergites negros con mi-

cropubescencia plateada y pelos cortos entremezclados negros con blancos;

primer tergite abdominal con 2 cerdas gruesas negras en cada lado; primer

sternite rojizo, los restantes en su mayor parte negros; sternites con micropu-

bescencia plateada rala y pelos negros también ralos. Ovipositor café rojizo

brillante con pelos delgados, blancos y ralos; 5 pares de espinas negras en los

acanthophorites (Fig. 60).

MACHO. Similar a la hembra, genitalia (Fig. 57) rotada desde 909 a

1809, cubierta de pelos blancos ralos, entremezclados con pelos negros en la

parte dorsal del hypandrium (Fig. 55), gonopodos y parte posterior de los

epandria.

MEDIDAS. Largo total 14.0—23.0 mm, promedio 17.0 mm (typo 15.0 mm);

largo de ala 8.5-12.0 m, promedio 9.2 mm (typo 8.6 mm); ancho de ala

2.2-3.5 mm, promedio 2.6 (typo 2.3 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 163 y 249. COQUIMBO: 19 Coquimbo,

Nov. 2—3. L. E. Peña (INCO); 17 Hda. IlÍapel, Coquimbo, 600 m, Nov.

—83—

1—7, 1954, L. E. Peña (BRAS); 19 La Serena, Nov. 26, 1962, Archer (INCO»;

13 Río Chuapa, Coquimbo, Nov. 16, 1963, L. E. Peña (INCO); 1g Ton-

goy, Coquimbo, Oct. 27, 1961, L. E. Peña (OTT); 1g 39 Vicuña, Ene. 1937,

EP Reed (CAS) 1 97 bm. Not Ovalle, Dic: 15-10 FRAME CASAS

5, ma. .S. W.. of Ovalle, Dic. 12, 1950, R. 8 M. (CAS); 1 95m. Not HMlapek

Nov. 30, 1950, KR. 8 M. (CAS); ls: bm. NN. of. Los Vilos, Dic. 13950

R. 82M, (CAS); 1.7 12 mi. N. of Los Vilos, Dic: 13,:1950, -K3 8 MI(GCAS)

13 Los Maquis, Quiximari, Mar. 11, 1964, L. E. Peña (INCO). CURICO:

13 Los Queñes, Estero La Jaula, Cordillera Curicó, Ene. 4—18, L. E. Peña

(INGO); 19 Río “Teno; Cordillera “Curicó, “Feb H1214, 4965; MESES ECHA

(INCO). MAULE: 19 N9 28676, Cauquenes, Maule, Ene. 25, 1955, L. E. Peña

(BRAS). ÑUBLE: 29 Bulnes, Abril 8, 1962, Méndez (INCO); 19 Chillán,

Abril, 6, 1961, Artigas (INCO); 1% 19 Chillán, Ene. 31, 1962, Alister

(INCO). O'HIGGINS: 17 22 La Leonera, O'Higgins, Feb. 24, 1962, L. E.

Peña (OTT); lp La Rosa, Mar. 15, 1954, L. E. Peña (BRAS). SANTIAGO:

13 El Canelo, Santiago, Dic. 29, 1950, L. E. Peña (INCO); 17 N% 20602,

El Cane'o, Santiago, Ene. 1949 (BRAS); 23 Lampa, Zapata (CEE); 19

Peñalolén, Toro (CEE). VALPARAISO:: 19 Valparaíso, Dr. Reed (INCO);

19 Calera, Feb., 1930. Dr. Reed (CAS); 1 19 (typos de Bathypogon

hirtuosus Schiner) Va paraiso, Novara R., Alte Sammlung (WIEN). Sim loca-

lidad. nú fecha: 1.2 (JIM) 15. Ghile; E. P. Reed (CAS GrFESDARECA

(CAS) Lg N9-:58, Chile, Dr Redd: (CAS) 1 32.9 Ghile E. Po Rccom(CAS

19 (typo) (JTM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 497.

DISCUSION. Esta especie tiene variaciones importantes en tamaño, como *

se demuestra en las med'das. El color de los pelos en los sternites y en los

tergites varía del negro al blanco, siendo corrientemente de los dos colores

entremezclados. La vestidura del disco del scutellum varía desde unos pocos

pelos negros, cortos, esparcidos, hasta abundantes pelos lanosos biancos. El nú-

mero de cerdas scutellares varía de 3 a 6 pares. La distribución de las cerdas

en los fémures posteriores varía; la distribución mostrada en la Fig. 56 es en

parte generalizada, pero es útil para dar una idea de cómo separar las hem-

bras de C. nigribarbis de las hembras de C. keisseri. Estas dos especies están

muy próximas y demuestran poseer muchas simisitudes. Los machos sin embar-

go pueden ser fácilmente separados por el color de las alas, las cuales son blan-

cas en la parte basal en keisseri y uniformemente coloreadas de café claro en

nigribarbis.

= ¡4

Creolestes parvum Bigot

(Fig. 61)

Bathypogon parvum Bigot, 1878, p. 432, Chile; Stuardo, 1946, p. 81; Hull,

1962, p. 150.

TYPO: G, Chile, deposttado en el Hope Department of Entomology,

Oxford University, England (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro con micropubescencia plateada; tercer seg-

mento antenal en su mayor parte café rojizo; fémures uniformemente negros

con pelos blancos ralos y cerdas negras; tibias y tarsos café rojizo con pelos

blancos y la mayoría de las cerdas negras, tibias y tarsos posteriores más oscu-

ros que las tibias medianas y anteriores; alas hyalinas.

REDESCRIPCION DEL TYPO (¿£). Cabeza en vista frontal: cara cu-

bierta con micropubescencia plateada, excepto bajo las antenas; frente negra

con peios blancos ralos; ocellarium negro con unos pocos pelos blancos cortos

y las cerdas ocelares negras; ocelos café. Cabeza en vista lateral: giba facial

negra con micropubescencia plateada rala, mystax blanco; segmentos antenales

en su mayor parte café rojizos, primer segmento con pelos blancos, segundo

segmento con pelos y cerdas bancas, excepto una cerda negra en el dorso,

tercer segmento con el cuarto basal oscuro, con un microsegmento cilíndrico

oscuro que lleva una corta espina en el ápice; pelos occipitales negros, sua-

vemente curvados hacia adelante, pelos blancos a lo largo del borde posterior

de los ojos, vestidura del área postocular de pelos blancos lanosos; probosis

negra brillante con pelos largos blancos en la mitad basoventral y pelos cor-

tos blancos en el ápice; palpos maxilares con pelos cerdosos largos y negros.

Protórax negro brillante con micropubescencia plateada rala, cubierto de pe-

los lanosos blancos d'stribuídos uniformemente; collar con pelos semejantes

más algunas cerdas negras, especialmente en el área dorsal. Pleura toráccica

negra, con densa micropubescencia plateada y unos pocos pelos largos y de-

gados, blancos especialmente en la mesopleura y en la sternopleura; cerdas

mesepimerales blancas con 4-5 cerdas negras entremezcladas. Mesonotum, ca-

llos humerales y cailos posteriores negros, con micropubescencia plateada y

cortos pelos ralos entremezclados negros con blancos, pelos blancos más abun-

dantes en el área central del tercio posterior del mesonotum; callos humera!es

con 5 pelos negros; disco dei scutellum negro, con densa micropubescencia pla-

teada y unos pocos pelos cortos negros; 7 cerdas dorsocentrales negras; 3 cer

das notopleuras negras; 2—4 cerdas intraalares negras; 2-4 cerdas postalares

negras; 3 pares de cerdas scutelares negras con unos pocos pelos entremedio.

Costados del postmesonotum negros con denga micropubescencia plateada.

Alas hyalinas, venas café rojizas. Coxas, trocánteres y fémures uniformemente

e E

negros con pelos blancos esparcidos, cerdas negras, coxas anteriores con abun-

dantes pelos blancos en el lado frontal, coxas con micropubescencia plateada;

tibias y tarsos café, tibias posteriores oscuras, cubiertas de pelos blancos ralos,

cerdas negras, unas pocas cerdas blancas en el dorso de los segmentos tarsales

medianos y anteriores. Uñas negras, tercio basal rojizo. Térgites y sternites

abdominales negros con micropubescencia plateada, la cual es más densa en los

costados de los tergites y sternites; vestidura abdominal de pelos negros y blan-

cos cortos entremezclados, pelos blancos más largos en los costados de los 3

primeros segmentos. Genitalia negra, cubierta de pelos cortos, blancos, entre-

mezclados con algunos pelos negros más largos, rotada en 1809; hypandrium

ilustrado en Fig. 61.

HEMBRA. Desconocida.

MEDIDA DEL TYPO. Largo total 12.3 mm; largo de ala no medido

(ambas alas incompletas); ancho de ala 2.2 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 13 (typo); la información de las etiquetas

dice: “Type Dip: 158 Bathypogon parvum Bigot, Hope Dept. Oxford”;

“Coll. Bigot abt. 1845—93. Pres 1913 by J. E. Collin”; “Bathypogon parvum

21 in Coll. Bigot SF Chile” (3 etiquetas).

DISCUSION. El typo es el único ejemplar conocido. El color negro uni-

forme de los fémures y de las cerdas de las patas separan esta especie de las

otras especies cercanas: C. rubricornis y C. rufescens. El ejemplar typo tiene

ambas alas incompletas y le faltan algunas de las cerdas mesonotales. La forma

del hypandrium desde una vista dorsal es diferente del de las dos espe-

cies indicadas. La única información con respecto a localidad es “Chile”; con-

siderando que no han sido colectados en Chile otros ejemplares de esta espe-

cie, debe estimarse la posibilidad de que esta especie pueda no ser de

Chile, y la información de Bigot con respecto al país de origen sea un error.

Creolestes rufescens (Philippi) n. comb.

(Figs: DI 0209971498)

Clavator rufescens Philippi, 1865, p. 700.

Hypenetes rufescens (Philippi). Bromiey, 1932, p. 264; Hull, 1962, p. 54.

Pritchardia rufescens (Philippi). Stuardo, 1946, p. 80.

Bathypogon claripennis Schiner, 1868, p. 160, Chile (typo visto); Stuardo,

1946, p:.S15 Etull, 1962. p. 150;

TYPO: perdido. Un neotypo es designado en este trabajo como un ¿

de Manquehue, Chile, Ene. 20, 1935, F. Ruiz; este ejemplar está depositado

en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile; los typos

(13 19) de Bathypogon claripennis Schiner, están en el Naturhistorisches

Museum, Wien, Austria (vistos).

DIAGNOSIS. Una especie negra y rojiza; fémures negros en la parte ex-

terna, rojizos en el interior; la mayoría de los pelos y cerdas amarillas, las

cerdas mesonotales corr:entemente negras; alas usualmente hyalinas, algunas

veces ligeramente fumosas; hypandrium triangular.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (¿G). Cabeza en vista frontal: cara cu>

bierta por densa micropubescencia amarilla; frente negra con micropubescencia

blanca rala, que le da una apariencia gris, frente con pelos blancos; oceila-

riem del mismo color de la frente, ocelos café; cerdas ocelares blancas. Cabe-

za en vista lateral (Fig. 52): giba facial roj'za, con micropubescencia amarilla

en los bordes de los ojos, parte lateral o borde oral negro; mystax amarillos;

antenas café rojizas, primero y segundo segmento con pelos y cerdas blancas;

barba de pelos lanosos; pelos occipitales amarillos; covertura postocular de

pelos blancos; proboscis negra brillante con pelos blancos en la parte baso-

ventral y pelos cortos amarillos en el ápice; palpos maxilares café rojizos con

peios blancos. Protórax negro con micropubescencia dorada y pelos blancos;

collar sin cerdas distintas, sólo con pelos blancos semejantes a los de los cos-

tados, 2-3 pelos negros en el área dorsal. Pleura toráccica negra con áreas

rojizas, cubierta de micropubescencia plateada y dorada; cerdas mesepimerales

amarillas, con pelos negros con unos pocos pelos blancos entremezclados; meso-

pleura, sternopleura y metepisterna con cerdas amarillas y algunos pelos blan-

cos entremezclados con unos pocos pelos negros. Mesonotum negro, línea cen-

tral y manchas laterales cubiertas de densa micropubescencia café; líneas cen-

trales unidas formando una banda centrai ancha, micropubescencia dorada a

lo largo de los bordes de la banda central y alrededor de las manchas late-

rales; vestidura mesonotal de pelos cortos, ralos, entremezclados negros con

blancos, los pelos blancos más largos y más abundantes en la parte posterior;

callos humerales y posteriores roj zos, con micropubescencia plateada, pelos

blancos; disco scutellar uniformemente cub'erto con micropubescencia densa y

algunos pelos blancos; 2 cerdas notop“eurales negras y una café; 10 cerdas

dorsocentrales negras, ubicadas detrás de la sutura transversa; 3 cerdas intraa-

lares negras y una café; 6 postalares negras y una café; 3 pares de cerdas

scutellares café y dos pares negras con unos pocos pelos blancos entremezcla-

dos. Costados dei postmesonotum cubiertos de densa micropubescencia platea-

da. Alas hyalinas, venas café oscuras. Coxas negras, débilmente rojizas a lo lar-

go del borde ventral, la mayor parte cubiertas de micropubescencia plateada,

pelos de las coxas blancos, coxas anteriores y medianas con abundantes pelos en

el costado anterior; fémures negros en el exterior, rojizos en el interior, con

pelos biancos ralos, los cuales son más largos en la parte ventral de los fému-

res anteriores, cerdas blancas, unas pocas cerdas negras, cortas en la. parte

Ey a

dorsal de los fémures anteriores y posteriores; tibias y tarsos rojizos, tibias

posteriores más oscuras, pelos ralos, blancos, las cerdas en su mayoría blancas,

unas pocas cerdas negras en el dorso de las tibias y tarsos posteriores, cerdas

negras más abundantes en la parte ventral de los tarsos. Uñas negras, cuarto

basal rojizo. Abdomen negro con los bordes laterales y posteriores de los ter-

gites rojizos; esternites rojizos; manchas de micropubescencia plateada en los

costados y dorso de los tergites, sobre los sternites la micropubescencia es más

abundante y más uniformemente distribuida; abdomen cubierto con pelos blan-

cos cortos, ralos, los cuales son más largos en los costados de los dos primeros

segmento, además hay algunas cerdas entremezcladas amarillas con negras en

los costados del primer tergite. Genitalia (Fig. 51) en su mayor parte negra,

con algunas áreas rojizas, cubierta con pelos cortos blancos; hypandrium trian-

gular, con pelo largo blanco en el extremo; algunos pelos negros en la parte

posterior de los epandria.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Fig. 53) rojizo oscuro con

pelos blancos; 5 pares de espinas oscuras en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 16.0—21.0 mm promedio 19.0 mm (neotypo 21.0

mm); largo de ala 9.5—12.0 mm, promedio 10.1 mm (neotypo 12.0 mm);

ancho de ala 2.8—3.4 mm, promedio 3.0 mm (neotypo 3.4).

MATERIAL EXAMINADO. 71% 59 y 2 (gen. miss.). SANTIAGO: 17

19 Santiago, NO 7666, NO 7676, Puelma (BERL); 1 Santiago (JIM); 13

(neotypo) Manquehue NQ 38, Ene. 20, 1935, F. Ruiz (INCO); 19 Manquehue,

Feb. 25, 1934, F. Ruiz (INCO); 1 (gen. miss.) Santiago. Ene. 5, 1957, ].

García (MICH); 1Z 19 Santiago, B. P. Clark (USNM). VALPARAISO:

1 19 (typos de B. claripennis Schiner) Valparaíso, Novara R. Alte Samm-

lung (WEIN). Sin localidad ni fecha: 13 (INCO); 17,19 y 1 (gen. miss.).

(JIM),

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 498.

DISCUSION. El color del mesonotum cambia con la edad del ejemplar,

tornándose más oscuro; las cerdas del mesonotum son, en la mayoría de los

casos, negras pero en dos ejemplares estudiados estas cerdas son totamente

amarillas. Las cerdas scutellares varían desde todas amarillas hasta 3 pares ama-

rillas y 2 pares negros como se describen para el neotypo. Del material pro-

veniente de la colección J. T. Medina, 4 ejemplares tienen etiquetas de iden-

tificación manuscritas por Philippi, en ellas se lee: “Clavator leucopogon Ph.

n. sp.”; “Clavator leucopogon Ph.”; Clavator? pyrrhoneurus Ph. n. sp.”;

“Asilus? nuevo”. Estos nombres son nómina nuda pues nunca han sido publica-

dos. €. rufescens y C. rubricornis son especies muy próximas, el color del

cuerpo, de las cerdas, alas y pelos es igual en ambas especies. Las diferencias

más constantes en ambos sexos son el color de la giba facial desde una vista

lateral y el tamaño; C. rufescens tiene la giba facial rojiza y el largo total

es mayor de 15 mm, mientras C. rubricornis tiene la giba facial negra y el

largo total es menos de 14 mm. Los machos pueden ser fáciimente separados

por la forma del hypandrium (Figs. 50, 51).

Creolestes rubricornis (Philippi) n. comb.

(Figs. 50, 448)

Clavator rubricornis Philippi, 1865, p. 700.

Hypenetes rubricornis Philippi). Bromley, 1932, p. 264; Hull, 1962, p. 154.

Pritchardia rubricornis (Ph:lippi). Stuardo, 1946, p. 80.

Alyssomyia rubricornis (Philippi). Carrera £* Papavero, 1965, p. 51-52.

TYPO. Perdido. Se designa como neotypo a un gf de Cerros de Nahuel-

buta, Angol, Chiie, Ene. 1, 1937, D. S. Bullock; este ejemplar está depositado

en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo en su mayor parte negro, con abundantes áreas ro-

j zas; fémures negros en el exterior, rojizos en el interior; pelos de la cabeza

y el cuerpo blancos, la mayoría de las cerdas amarillas, unas pocas cerdas ne-

eras en el mesonotum y en los tarsos; alas hyalinmas; giba facial desde una

vista lateral negra; hypandrium corto, con un proceso distal corto y puntudo.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (¿G'). Cabeza en vista frontal: cubierta

de abundante micropubescencia amarilla, la cual es menos densa a lo largo

de la línea central y bajo las antenas; frente negra con micropubescencia pia-

teada, rala, pelos frontales blancos; ocellarium del mismo color de la frente,

ocellos café oscuros; cerdas ocellares biancas. Cabeza en vista lateral: giba fa-

cial negra, con micropubescencia plateada rala, la cual es más densa a lo lar-

go de la porción superior del borde de los ojos; mystax amarillo; antenas ca-

fé rojizo oscuras, primer segmento con pelos y cerdas amariilas; barba de pelos

blancos lanosos; pelos y cerdas occipitales blancas; cerdas postoculares blancas;

vestidura del área postocular de pelos blancos ralos; proboscis negra con re-

flejos rojizos, pelo largo ralo, bianco en la parte ventral, pelos cortos amari-

llos en el ápice; palpos maxilares negros con pelos blancos. Protórax negro

con micropubescencia plateada y dorada y pelos blancos largos, ralos, los

cuales son más densos en los costados y en los lóbulos protoráccicos; collar

con pelos blancos largos, sin cerdas distintas. Pleura toráccica negra con gran-

des áreas rojizas, densa micropubescencia plateada y dorada, unos pocos pelos

delgados en la mesopleura y en la sternopleura; cerdas mesepimerales amari-

llas. Mesonotum negro, líneas centrales y manchas laterales cafés, rodeadas de

micropubescencia plateada; callos posteriores y humerales rojizos con micropu-

380 "zs

bescencia dorada, rala y pelos blancos; vestidura del mesonotum de pelos

cortos, entremezclados negros con blancos, los pelos blancos más abundantes

en la parte posteror y a lo largo de los costados; disco del scutello cubierto

de densa micropubescencia plateada y peios blancos débiles, ralos; 8 cerdas

dorsocentrales entremezcladas negras con blancas; 3 cerdas notopleurales ama-

rillas; 2 cerdas intraalares amarillas; 3 cerdas postalares amarillas; 3 pares de

cerdas scutellares (faltan en el neotypo, la mayoría de ellas amarillas en los

otros ejemplares). Costados del mesonotum negro densa micropubescencia pla-

teada. Alas hyalinas, venas café claro. Coxas negras brillantes con áreas rojizas,

parcialmente cubiertas de micropubescencia plateada, pelos blancos, más abun-

dantes en el costado anterior de las coxas anterores y medianas; trocánteres

en su mayor parte rojizos; fémures negros en el costado externo, rojizos en

el interno, cubiertos de pelos cortos blancos y ralos, cerdas blancas; tibias y

tarsos café rojizo oscuro con pelos y cerdas blancas, algumas cerdas negras

cortas en el costado ventral de los tarsos. Uñas negras, cuartos basales rojizos.

Tergites abdominales negros con grandes áreas rojizas en los costados, sternites

rojizos; vestidura del abdomen de pelos cortos blancos, los cuales son más lar-

gos en los costados de los primeros dos segmentos, 4 cerdas amarillas en los

costados del primer terg'te. Genitalia (Fig. 50) rojiza con pelos blancos;

hypandrium corto, con un proceso distal corto; gonopodos puntudos en el

ápice.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor negro brillante, con pelos cor-

tos, blancos y débiles; 5 pares de espinas negras en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 11.0—14.0 mm, promedio 12.5 mm (neotypo 13.0

mm); largo de ala 7.2—-8.5 mm, promedio 8.0 mm neotypo 8.1 mm); ancho

de ala 2.2-2.9 mm, promedio 2.6 mm (neotypo 2.7).

MATERIAL EXAMINADO. 4 y 42. MALLECO: 19 AncolDicós

1960, C. García (INCO); 2 Angol, Nov. 20, 1954, C. Pérez (MICH); 1G

(neotypo) Cerros de Nahuelbuta, 200 m., Angol, Ene. 1, 1937, D. S. Buliock

(INCO); 19 Cerros de Nahuelbuta 200 m., Angol, Ene. 1, 1937, D. S. Bullock

(USNM). MAULE: 19 Tregualemu, Maule - Ñuble, Dic. 11, 1953, L. E. Pe-

ña (INCO). ÑUBLE: 3g Cobquecura, Ñuble, Dic. 1953, L. E. Peña (2 OT,

1 INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. llustrada en Fig. 448.

DISCUSION. Esta especie está próximamente relacionada con C. rufes-

cens; para separarlas ver discusión en C. rufescens.

— 90.—

DASYCYRTON Philippi

Dasycyrton Philippi, 1865, p. 1015 Eh 1962, p. 139:

TYPO DEL GENERO: Dasycyrton gibbosus Philippi 1865, por monotipía.

Cabeza en vista frontal un—tercio más ancha que alta; vertex moderada-

mente hundido; ocelo medio en la base del ocellarium. Cabeza en vista late-

ral: área postocular angosta, un=sexto del ancho del ojo; giba facial ausente

o muy reducida; tercer segmento antenal lleva un corto microsegmento y un

stylo terminal con una corta espina en el ápice; mystax variable, algunas es-

pecies con abundantes pelos finos y largos desde la base de las antenas hasta

el borde oral, en otros, el mystax está reducido a dos o tres líneas de cerdas

de tamaño moderado en el borde oral. Mesonotum hinchado con una aparien-

cia de jorobado; notum con áreas polinosas que forman manchas característi-

cas; vestidura del mesonoto variab:e, desde con pelos ralos de mediano tama-

ño y cerdas hasta abundante cubierta de pelos largos; scuteilum cubierto de

micropubescencia; 1-6 pares de cerdas scutelares; costados del postmesonotum

sin pelos, sólo con micropubescencia. Celda marginal abierta; cuarta celda pos-

terior abierta; R, alcanza el borde del ala casi en el ápice del ala; R, alcan-

za el borde del ala detrás del ápice; celda anal más angosta cerca del borde

del ala, pero siempre abierta; M, y m forman un ángulo de 1200. Espina de

las tibias anterlores ausente. Abdomen tan ancho como el mesonotum, depri-

mido. Alas extendiéndose más allá del extremo dei abdomen. Genitalia del

macho corta, rotada parcialmente, corrientemente en 60 a 909; hypandrium

pequeño, triangular; epandrium moderado, no en forma de forceps; gonopo-

dos con una proyección delgada, dirigida hacia atrás y curvada hacia el inte-

rior, con cerdas en el ápice. Genitalia femenina oculta bajo el séptimo tergite,

ovipositor con espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 11 especies

Las especies chilenas de Dasysyrton difieren de las especies mejicanas de

Holopogon Loew por no tener las tibias posteriores claramente dilatadas;

cuando la porción apical de las tibias posteriores es ligeramente dilatada, no

son mucho mas gruesas que los fémures correspondientes. El primer segmento

tarsal de las tibias posteriores munca se presenta fuertemente dilatado o mas

grande, mientras que en las especies nor—mejicanas este es mas largo y grueso

que los cuatro restantes, los cuales son claramente semi—esféricos.

Dr. C. H. Martin en comunicación personal (Feb. 15, 1965), dice:

“Holopogon seems to be restricted to northern Mexico; 1 do not believe the

genus is in Chile. I did not find Bigot's specimens either at Oxford or in

Paris. Williston's Biologia report of Holopogon from central Mexico is an

error. 1 have seen his types”.

Fuera de las diferencias de estructura de las patas posteriores, no he po-

dido encontrar ningún otro carácter morfológico estable que permita separar

las especies chilenas del género Dasycyrton Ph. de las especies nor—mejicanas

del género Holopogon Loew. Ambos géneros son muy próximos sin embargo

no se tienen noticias de material de ninguno de estos géneros colectados en-

tre Méjico y Chile.

CLAVE PARA LAS ESPECIES CHILENAS DE DASYCYRTON

Jl Mystax uniformemente blanco, blanco y negro o amarillo y

TESTO" MI CIAO eto des PA ad TO lodo LEER SRA A AS 2

1". Miystax* UNIOrMEMENTE MERO a 6

24 ON Miystax' blanco y «negro o amarillo Y neero A 3

2 Mystax unitormenente Dan TOR 4

3(2). Mystax denso, mitad superior de pelos negros, mitad inferior

de pelos blancos; cuerpo con largos pelos blancos; banda cen-

tral del mesonotum con abundante pelo largo en forma de

una “tuza”, los pelos son negros antes de la sutura transversa

y blancos, posterior" a la sutura cas. D. gibbosus Philippi

Se Mystax ralo, pelos amar'llos y negros entremezclados unifor-

memente; banda central del mesonotum sin pilosidad abun-

dante e o ea D. notocinereatum n. sp.

4(2”. Cuerpo y patas, excepto en los tergites, con abundante pelo

largo; mystax denso, largo, ocupando toda la cara ............

D. lanosus n. sp.

Eo Cuerpo y patas no como en el anterior; mystax ocupando la

mitad basal de la giba facial o reducido solo al borde oral .... 5

(E). Largo menor de 3,5 mm; cabeza globosa, vertex muy débilmente

hundido, casi imperceptible; mesonotum MEgTO .cmiccciinicicos.

E OR D. minusculus nm. sp.

é Largo sobre 8 mm; cabeza no globosa, vertex claramente hun-

dido; mesonotum gris con 2 bandas centrales y manchas la-

terales negras, algunas veces representadas por líneas en

forma ide ita ETE Rea AOS D. arrayanensis n. sp.

615. Mesonotum fuertemente elevado, con abundante pelo en forma

de tuza, tan largo como tres—cuertos del alto del mesonotum

ME e el e E a AR TO E D. gibbosus

6”. Mesonotum no como en la descripción anterlOr cnc... 7

716”). Cara, mesopleura y parte presutural del mesonotum claramente

gris plateado; machos cussroninstats D. notocinereatum n. sp.

de NO' Como envia ¡UESCIPCIÓN AMECLIOL arica qen denetuaso tonada boe Pese 8

8(7). Los dos—tercios basales de los fémures negros, tercio apical

rojizo; tibias y tarsos rojizos; costados de los tergites con

areas cafés y “blanquecinas... icon caonamessss D. sucinopedis n. sp.

S”. Fémures, tibias y tarsos un formemente negros; costados de

E O Sc os a A 9

9(8”. Pelos y cerdas de las patas en su mayoría blancos o amarillos,

débiles; sin cerdas gruesas en los fémures posteriores, o al

menos: con menos: de ¡cuatro! cerdas; cortas nui Ed 10

9 Pelos y cerdas de las patas negros y gruesos; fémures posteriores

E E O 11

10(9). Mystax ralo, ocupando de dos—tercios a tres—cuartos de la gi-

ba facial, dirigido hacia abajo; alas fumosaS o...

O A E ER D. tener (Bigot)

10”. Mystax reducido a dos grupos de pelo negro cerca del borde

oral, dirigido hacia abajo; alas café ........ D. coquimbensis n. sp.

(O Cara dorada, mystax ralo, ocupando la mitad basal de la giba

facial, dirigido hacia adelante ...................... D. papaverol n. sp.

¡Aba Cara plateada; mystax reducido a dos grupos de pelos negros

cerca del borde oral, dirigido hacia abajo ........ D. medinae n. sp.

Dasycyrton arrayanensis n. sp.

(Figs. 70, 83, 478)

TYPO. 9 de Arrayán, Enero 2, 1964, Herrera; este especimen está depo-

sitado en el Departamento de Zoología de la Universidad de Concepción,

Chi:e.

DIAGNOSIS. Cuerpo cubierto de m'cropubescencia plateada; mesono-

tum con dos delgadas bandas centrales negras y líneas en foma de C en los

103

costados, antes de la sutura transversa, detrás de la sutura las manchas latera-

les son normales; dorso de los tergites negros, plateados en los costados; tibias

café; mystax blanco, en su mayoría en el borde oral; alas hyalinas; ovipositor

con espinas negras.

DESCRIPCION DEL TYPO (9). Cabeza en vista frontal: frente y cara

cubierta por densa micropubescencia plateada; una depresión negra en forma

de V debajo del ocellarium; dorso del ocellarium negro brillante, ocelos ama:

rillo pálido ocelo med'o rodeado de micropubescencia plateada; cara con dé-

biles pelos biancos; cerdas ocelares blancas. Cabeza en vista lateral (Fig. 70):

giba facial ausente, cara levemente curvada; mystax de cerdas blancas ubica-

das principalmente en el borde oral o cerca de él, formando una línea, unos

pocos pelos en el medio de la cara; antena (Fig. 83; negra, primero y segun-

do segmentos con gruesas cerdas café, más largas en el lado ventral; barba

rala, con pelos cortos blancos; área occipital con un pequeo tubérculo pun-

tudo hacia atrás (es la extensión posterior del ocellarium); cerdas occipitales

cortas, café, ordenadas en dos grupos, uno a cada lado del vertex, cada grupo

consiste de dos lineas de cinco cerdas cada una; borde posterior de los ojos

cubiertos de micropubescencia plateada, cerdas postoculares cortas, café, orde-

nadas en una sola línea a lo largo del borde de los ojos, proboscis negra con

unos pocos pezos a lo largo del costado ventral y pelo corto blanco en el

ápice; palpos maxilares negros con algunos pelos blancos. Protorax negro con

micropubescencia plateada, excepto en el centro del pronotum donde es ne-

gro brillante; collar con 10 cerdas café, gruesas. Pleuras toráccicas cubiertas

de densa micropubescenc:a p:ateada; 2 gruesas cerdas mesopleurales amarillas;

cerdas mesepimerales largas, amarillas. Mesonotum cubierto de micropubescen-

cia plateada, excepto sobre las manchas negras; 2 bandas centrales negras y

angostas; una mancha negra inmediatamente detrás de cada callo humeral;

manchas laterales presuturales en forma de C, las postsuturales reducidas a

2-3 pequeñas manchas; mesonotum con pelos dorados muy cortos, algunos

ordenados en filas, principalmente entre y a ambos costados de las bandas

centrales; callos humerales negros, parcialmente cubiertos de micropubescencia

plateada y unos pocos pelos negros muy cortos y delgados; callos posteriores

semejantes a los humerales; disco del scutellum negro brillante, bordeado de

m'cropubescencia plateada excepto en el centro del borde posterior; cerdas

dorsocentrales no distintas; 2 cerdas notopleurales gruesas y amarillas; 1 grue-

sa cerda intraalar amarillas; cerdas postalares ausentes; disco del scutellum

sin pelos; 1 par de cerdas scutellares amarillas; costados del postmesonotum

con micropubescencia plateada, sin pelos. Alas hyalinas, venas negras. Coxas

negras con micropubescencia plateada, pelos amarillos, más abundantes en el

área frontal de las coxas anteriores; trocánteres, fémures y tibias café oscuras,

casi negro en el centro del fémur, cerdas y pelos negros; uñas negras brillan-

E ye

tes. Tergites negros brillantes, una banda plateada en forma de L en los cos-

tados; tergites cubiertos de pelos cortos, amarillos, uniformemente distribuidos,

una pequeña mancha negra en la base de cada pelo ubicado en las bandas

plateadas laterales; primer tergite con tres cerdas amarillas gruesas y un grupo

de pelos bancos delgados en cada lado; sternites con pelos cortos y ralos.

Genitalia telescopeada, negra; ovipostor con 3 pares visibles de espinas.

MACHO. Semejante a la hembra; genitalia café, telescopeada, oculta por

el sexto segmento; alas ¡igeramente amarillas; color del abdomen, fémures y

venas, ligeramente diferente que el de las hembras.

El nombre arrayanensis se refiere a la localidad del typo.

MEDIDAS. Largo total 7.6—8.6 mm, promedio 8.1 mm (typo 8.6 mm);

largo de ala 5.7-6.5 mm, promedio 6.1 mm (typo 6.5 mm); ancho de ala

1.8—2.1 mm, promedio 1.9 mm (typo 2.1 mm).

MATERIAL EXAMINADO: 17 19. BIO-BIO: 1g Bio-Bio, Feb.,

1925 Dr. Reed (INCO). SANTIAGO: 192 (typo) Arrayán, Ene. 2, 1964,

Herrera (ÍNCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 478.

DISCUSION. El macho se d'ferencia de la hembra typo por tener bien

definidos las manchas laterales negras, los fémures café claros, las alas ligera-

mente amarillas con las venas café claras.

Dasycyrton coquimbensis n. sp.

(Figs. 18, :£77)

TYPO. 9 de Illapel, Coquimbo, Nov. 1-7, 1954, L. E. Peña; este ejem-

plar está depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad de

Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; abdomen con bordes laterales plateados; pe-

los y cerdas del mesonotum y de las patas finos y amarillos; alas un'formemen-

te café.

DESCRIPCION DEL TYPO (9). Cabeza en vista frontal: Frente negra

con una depreción en forma de V bajo el ocellarium y una mancha triangu-

lar plateada bajo el ocelo frontal, pelos negros; cara densamente cubierta por

micropubescencia «amarilla; ocellarium negro, extendiéndose posteriormente,

pelos negros; ocelos rojizos; cerdas ocelares gruesas, negras. Cabeza en vista la-

teral: giba facial ausente, cara levemente cóncava; mystax compuesto de fuer-

tes cerdas negras, dispuestas en dos grupos cerca del borde oral; antenas

(Flg. 78) negra, primer y segundo segmento con pelos negros, mas largos en

ÓB=

la parte ventral, mezclados con unas pocas cerdas café claras; barba de pelos

biancos finos dispersos; pelos occipitales y cerdas occipitales cortas, amarillas,

ordenadas en líneas a lo largo dei borde posterior de los ojos; área postocular

plateada, con pelos blancos finos y dispersos; proboscis negra con pelos blan-

cos finos en el lado ventral, pelos cortos blancos en el ápice; palpos maxila-

res negros, con pelos ralos blancos y finos. Protórax negro, cubierto de micro-

pubescencia rala, plateada y finos pelos blancos dispersos; cerdas del collar no

distintas, en su lugar pelos similares a los de los costados. Esc!erites mesopleu-

rales negros, brillantes, con áreas de micropubescencia dorada y plateada en

casi cada esclerite; cerdas mesepimerales y otros pelos ralos en la mesopleura,

amarillos. Mesonotum con una ancha banda central negra sin división central,

a los costados grandes manchas laterales negras; una área de micropusbescen-

ciaa dorada oscura entre la banda central y los callos humerales; bordes de

la banda centraí y de las manchas laterales bordeadas de una línea de m'cro-

pubescencia dorada; tercio posterior de la banda central con micropubescencia

y algunos pelos largos dorados; mesonotum con finos pelos cortos amarillos,

excepto sobre la banda central y las manchas laterales; callos humerales ne-

gros, con micropubescencia dorada, rala, en la parte dorsal; callos posteriores

negros; disco del scutello negro; 3 cerdas notopleurales amarillas; 3 cerdas intra-

alares amarillas; cerdas postalares ausentes; disco del scutellum desnudo, negro

brillante; 2 (2) pares de cerdas scutelares amarillas, largas. Alas café, venas

café claras. Coxas negras brillantes con grandes áreas de m'cropubescencia

plateada; trocánteres, fémures, tibias y tarsos negros brillantes, pelos y cerdas

amarillas, negras en los tarsos. Abdomen negro brillante; tergites con una

ancha banda plateada en los bordes laterales; dorso de los tergites con cortos

pelos amarillos dispersos, primer tergite con pelos largos, amariilos y fuertes

cerdas en los costados; esternites negros con bandas plateadas atravesadas, pelos

amarillos, dispersos, uniformemente distrbuidos. Genitalia telescopeada, ocul-

ta bajo el séptimo segmento; espinas del ovipositor, negras.

MACHO. Desconocido

El nombre coquimbensis se refiere a la localidad del typo.

MEDICIONES DEL TYPO. Largo total 7.2 mm; largo de ala 5.2 mm;

ancho de ala 2 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 19%. COQUIMBO: 19 (typo) Hacienda

Mlapel, Coquimbo, 600 m., Nov. 1—7, 1954, L. E. Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. llustrada en Fig. 477.

DISCUSION. D. coquimbensis es próxima a D. medinae, pero puede se-

pararse por el color de las alas, pelos y cerdas; en coquimbensts, los pelos y

cerdas son amarillas y las alas cafés; en medinae los pelos y cerdas son ne-

gras y las alas hyalinas.

Dasycyrton gibbosus Philippi

(Figs. 82, 407, 492)

Dasycyrton gibbosus Philippi, 1865, p. 70, figs. 30 y 30a, Santiago y Aconca-

gua; ¡Stuardo, 1946, pp. 81; Hull, 1962. figs. 2524 y 2527 (ex. Philippi).

TYPO. Perdido, se designa un neotypo: g Cerro Caquis, Atacama, Dic.

14, 1938, E. P. Reed; este especimen está depositado en el Departamento de

Zoología, Universidad de Concepción, Ch:le.

DIAGNOSIS. Pequeña especie negra; patas negras; mystax negro en la

parte media superior y blanca en la inferior; mesonotum con abundante pe-

lo en la línea media en forma de una “tuza”, los cuales son negros antes

y blancos después de la sutura transversa; cuerpo y patas con pelos blancos;

alas hyalinas.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (¿). Cabeza en vista frontal: frente

negra, con micropubescencia bajo las antenas y a lo largo del borde de los

ojos; ocellarium negro brillante, ocelos amarillentos; cerdas ocelares indistin-

tas, en su lugar abundantes pelos largos y blancos, semejantes a los pelos de

la frente. Cabeza en vista lateral: giba facial ligeramente desarro lada, redon-

deada; mystax denso, mitad superior de gruesos pelos negros, mitad inferior

de pelos negros mas débiles; antenas negras, segundo segmento subesférico,

mas ancho que el primero, tercer segmento de acuerdo a la Fig. 84, primero

y segundo segmentos con pelos blancos, mas largos en la parte ventral; barba

blanca; pelos occipitales cortos, abundantes, blancos; área postocular con pelos

blancos; proboscis negra brillante con pelos blancos esparcidos en la parte

basoventral, pelos cortos ralos. Protórax negro brillante, con abundantes pelos

largos y blancos; cerdas del collar ind'stintas. Mesopleura negra brillante, con

pelo largo bíanco; algunos escasos pelos blancos en los esclerites laterales del

tórax; cerdas mesepimerales blancas. Mesonotum negro brillante, fuertemente

desarrollado, dando al insecto una apariencia de jorobado; sin líneas centrales

ni manchas laterales; en las áreas laterales hay pelos largos blancos ralos; a lo

largo de la línea media hay abundante pelo reclinado, largo, el que es negro

antes y blanco después de la sutura transversa tomando la apariencia de una

“tuza”; cerdas notopleurales, intraalares y frontales indistintas; scutellum ne-

gro brillante con reflejos azulados, sin pelos en el disco del scutellum, el cual

aparece oculto por los abundantes pelos proyectados hacia atrás desde el me-

sonotum; 9 pares de cerdas scutelares finas, largas y blancas; costados del post-

mesonotum negros brillantes. Alas hyalinas; venas café rojizas en el área y

cerdas blancas; cerdas ventrales de los tarsos negras (al typo le faltan el pri-

mero y el segundo par de patas); uñas negras brillantes. Abdomen negro bri-

llante, sin marcas, las vestidura dorsal es de pelos cortos ralos blanquecinos;

vestidura ventral, semejante a la dorsal pero mas larga y mas densa. Genita-

lia no rotada, pequeña, negra brillante; costados de los gonopodos con pe-

los blancos.

HEMBRA. Semejante al macho; genitalia corta, truncada; con cuatro pa-

res de espinas en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 5.5—6.3 mm, promedio 5.8 mm (neotypo 5.7 mm);

largo de ala 4.2—5.0 mm, promed'o 4.5 mm (neotypo 4.8 mm); ancho de

ala 1.6—1.8 mn, promedio 1.7 mm (neotypo 1.8 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 49 COQUIMBO: 1¿ (Neotypo) Ce-

rro Caquis, Dic. 14, 1938, E. P. Reed (INCO); 19 10 mi. W. of La Junta,

Dic. 7, 1950, R. £ M. (CAS); 12 Los Maitenes, 1200—1400 m., Oct. 15—17,

1954, L. E. Peña (INCO); 17 192. El Pangue, Andes Range, Coquimbo, Nov.

2, 1961, L. E. Peña (OTI); 29 Las Cardas, Coquimbo, Oct. 7, 1947 (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en la Fig. 492.

DISCUSION. D. gibbosus es fácilmente reconocible por la larga “tuza”

de pelos en la línea media del mesonotum. El mystax a menudo presenta

débiles pelos blancos en la parte inferior.

Dasycyrton lanosus n. sp.

(Fig. 79, 490)

TYPO. Z de Palos Negros, Curicó, Marzo 8—9, 1962, L. E. Peña, este

especimen está depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad

de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Oscuro; fémures negros, tibias y tarsos café rojizos; cabeza,

patas, tórasx, costados y vientre del abdomen con abundantes pelos sedosos

muy largos, dando la apariencia de lanoso; alas hyalinas.

DESCRIPCION DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal: cara y frente

negra, con pe-os largos y blancos en el borde de los ojos; ocellarium negro,

ocelos café oscuros; cerdas ocelares indistintas, ocellarium con abundantes pe-

los largos blancos sedosos. Cabeza en vista lateral: giba facial indistinta; mys-

tax de abundantes pelos blancos sedosos; primer segmento antenal café, los

restantes negros, tercer segmento atenuado, stylo largo, primero y se-

gundo segmentos con largos pelos blanco sedosos, los cuales son más

blancos; proboscis negra brillante, con pelos largos blancos en la mitad baso-

ventral, y pelos cortos ralos. Protórax negro con densas áreas plateadas, y pe-

los largos blancos sedosos; cerdas del collar indistintas. Mesopleura negra con

108:

áreas plateadas; cerdas mesepimerales largas y blancas. Mesonotum negro con

micropubescencia dorada algo rala; líneas centrales y manchas laterales indis-

tintas; disco del notum con pelos blancos ralos; callos humerales negros con

pelos blancos; callos posteriores negros; disco del scuteilum negro brillante;

cerdas dorsocentrales, notop!eurales, intraalares y postalares indistintas; cerdas

scutelares en forma de pelos, abundantes, semejantes a los pelos del mesono-

tum; costados del postmesonotum cubiertos de abundante micropubescencia

plateada, sin pelos. Alas hyalinas, venas negras. Coxas negras con abundante

micropubescencia y pelos blancos; fémures negros brillantes con abundantes

pelos erectos largos y blancos, sin cerdas discernibles; tibias y tarsos café roji-

zos, con pelos blancos y largos, semejantes a los de los fémures, cerdas débi-

les, blancas; uñas negras. Abdomen negro, costados de los tergites con una

mancha plateada en la mitad posterior, sternites uniformemente plateados, dor-

so de los tergites con pelos blancos finos cortos y ralos, el dorso del abdo-

men negro brillante con reflejos azulados; costados de los tergites y sternites

con abundantes pelos blancos largos sedosos. Genitalia rotada en 900, negra

con pelos largos blancos, siempre oculta por el séptimo tergite.

HEMBRA. Desconocida.

El nombre lanosus se refiere al largo pelo blanco que cubre la mayor

parte del cuerpo, dándole una apariencia lanosa.

MEDIDAS. Largo total 6.1—6.3 mm, promedio 6.2 mm (typo 6.1 mm);

largo de ala 4.7—5.3 mm, promedio 5.0 mm(typo 4.7 mm); ancho de ala

1.5—7.7 mm, promedio 1.6 mm(typo 1.5 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 2. CURICO: 13 (typo) Palos Negros,

1300 m., Curicó, Marrzo 8—9, 1962, L. E. Peña (INCO). Sim localidad. 13

Chile E. P. Reed (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. lustrada en Fig. 490.

Dasycyrton medinae n. sp.

(Fig. 86)

TYPO. Q, sin localidad ni fecha; este especimen está depositado en la

Colección José Toribio Medina, Museo Nacional de Historia Natural, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; frente con una depresión en forma de V

bajo el ocellarium; mystax negro, reducido al borde oral; mesonotum negro

con marcas plateadas y una mancha de densa micropubescencia dorada oscura

entre los callos humerales y las líneas centrales; abdomen negro brillante con

líneas plateadas en el área posterolateral. Patas negras. Alas ligeramente fu-

mosas.

—= 99 —

DESCRIPCION DEL TYPO (9). Cabeza en vista frontal: frente negra

con una depresión en forma de V bajo el ocellarium con una mancha pla-

teada en el centro; cara con abundante micropubescencia plateada; oceliarium

negro brillante, ocelos amaril os; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista late-

ral: cara ligeramente cóncava o plana; mystax reducido a dos grupos de cer-

das en el borde oral; antenas negras, primer y segundo segmentos con cerdas

negras, más largas en el borde ventral, tercer segmento antenal atenuado,

stylo largo, con una pequeña espina en el ápice; barba rala, amarilla; área

occip tal plateada; una prominencia detrás del ocellarium la cual es la conti-

nuación posterior de este, con pelos negros y ralos; cerdas occipitales cortas,

negras, ordenadas en un grupo de mas o menos 10 cerdas a cada lado de la

depresión del vertex y que se continuan en una simple fila de pelos por el

borde posterior de los ojos; proboscis negra, con unos pocos pelos blancos en

la parte ventral; palpos maxilares negros con peo blanco. Protorax negro, cos-

tados cub'ertos de micropubescencia piateada, collar con micropubescencia do-

rada, pelos largos, ralos amarillos; cerdas del collar indistintas, en su lugar

cortos pelos amarillos entremezclados con unos pocos pelos negros de igual lon-

gitud. Mesop'eura negra bri:lante con grandes áreas de micropubescencia pla-

teada en cada sclerite mesop-eural; mesopleura y sternopleura con unos pocos

pelos amarillos; cerdas mesepimerales negras y largas. Mesonotum con una

línea central negra, borde anterior de las manchas laterales anteriores y los

caos humerales con micropubescencia dorada oscura y cortos pelos negros re-

clinados; bordes laterales y anter'ores de las manchas laterales con micropu-

be:cencia dorada; callos humerales negros, con m'cropubescencia dorada en

el dorso; callos posterlores negros brillantes en el dorso, rodeados de micro-

pubescencia plateada, semejante a la que cubre el área entre las manchas.

posteriores y el scutellum; entre las manchas laterales poster'ores hay 2bundan-

tes pelos gruesos negros; 2-3 cerdas notopleurales negras; 1 cerda intraalar;

cerdas postalares ausentes; disco dei scutellum sin peos; 5 pares de largas

cerdas scutelares negras; cerdas dorsocentrales indistintas; costados del postme-

sonotum con micropubescencia plateada rala, sin pelos. Alas hyalinas, venas

café roj zas, coxas negras brillantes con pequeñas áreas plateadas, pelos en su

mayoría café, abundantes en la parte anterior de las coxas anteriores; trocán-

teres, fémures, tibias y tarsos negros brillantes, pelos y cerdas negras; lado

ventral de los fémures posteriores con dos filas de 9—11 cerdas largas; uñas

negras brillantes, base café rojiza. Abdomen negro brillante, tergites con ban-

das plateadas en los costados, a lo largo de los bordes posteriores; tergites

con pelos ralos cortos y negros; los últimos tres tergites con pelos amarillos;

costados del primer tergite con abundantes pelos negros y cerdas; stern'tes ne-

gros brillantes con bandas transversales plateadas, pezos café; sternites 5 y 6

coa pelos cortos blancos. Genitalia telescopeada, oculta por el tergite séptimo;

4 pares de espinas negras en el ovipositor.

— 100 —

MACHO. Desconocido.

El nombre medinae está en la etiqueta que lleva el ejemplar designado

typo, está manuscrito por Phiippi y dice: “Dasypogon medinae Ph. 1. sp.”

hasta donde se conoce, este mombre no ha sido descrito. En el presente traba-

jo, se ha mantenido el nombre que pensara usar Philippi.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 8.2 mm; largo alar 7.0 mm; ancho

de ala 2.5 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 192 sin localidad ni fecha, en J. T. M. Coll.

DISCUSION. Esta especie es próxima a D. coquimbensis de la cual pue-

de separarse por el color café de las alas y los débiles pelos y cerdas amari-

llas del mesonotum: D. medínae presenta los pelos y las cerdas negras y las

alas hyalinas.

Dasycyrton minusculus n. sp.

(Elp. 74,425)

TYPO. 2 de El Radal, Linares, Nov. 23-30, 1957, L. E. Peña; este

especimen está depositado en el Departamento de Zoo-ogía de la Universidad

de Concepción, Chie.

DIAGNOSIS. Diminuto; cuerpo negro brillante con pelos blancos; tercer

segmento antenai ancho; alas ligeramente fumosa; vertex bien desarrollado,

casi sin depresión, cabeza globosa.

DESCRIPCION DEL TYPO. (9). Cabeza en vista frontal: frente y cara

parcialmente cubierta por micropubescencia blanca; frente con dos bandas ne-

gras entre el ocellarium y la base de las antenas, entre ellas blanco; pelos

frontales blancos; ocellarium negro brillante; vertex casi sin hundimiento, mas

bien globoso; ocelos negros; cerdas ocelares blancas. Cabeza en vista lateral;

giba facial indistinta, pero la cara producida mas al:á de los bordes anteriores

de los ojos; mystax reducido a unos pocos pelos débiles amarillos, la mayoria

cerca del borde oral; antenas negras, primero y segundo segmentos con pelos

cortos café, tercer segmento grande, atenuado ventralmente en la mitad apical

(Fig. 77); barba de pelos cortos débiles y ralos; áreas occipital y postocular

negras, con pelos ralos, débiles y blancos sobre la mayor parte de las áreas;

proboscis negra br'llante, larga delgada, con unos pocos pelos blancos en la

base; palpos maxilares negros, con unos pocos pezos blancos delgados. Protórax

negro con pelos blancos; cerdas del collar amarilas. Mesopleura con mi-

cropubescencia gris; aproximadamente 4 cerdas amarillas, cerdas mesepimerales

amarillas. Mesonotum negro, líneas centrales y manchas laterales negras bri-

llantes, facilmente distinguibles debido a la falta de micropubescencia y pelos;

— 101 —

m'cropubescencia gris detrás de los callos humerales, y entre las líneas centra-

les y las manchas laterales presuturales; el resto del mesonotum con pelos

débiles y ralos; calios humerales y posteriores negros brillantes con pelos bian-

cos; tercio posterior de las líneas centrales bordeadas a ambos lados por una

línea de micropubescencia amarilla y 5-6 cerdas dorsocentrales tamb'én amari-

llas; disco del scutellum negro brillante en el centro, bordeado de micropubes-

cencia blanca; 4 cerdas notopleurales amarillas; 3 cerdas intraalares amarillas;

2 cerdas postalares amarillas; cerdas del mesonotum semejantes a los pelos;

5 pares de finas cerdas scutelares amarillas; costados del postmesontum negro

con micropubescencia blanca rala, sin pelos. Coxas negras con micropubes-

cencia y pelos blancos en los costados anteriores, mas destacadas en las coxas

anteriores; trocánteres, fémures, tibias y tarsos negros brillantes, pelos y cerdas

amarillas plateadas en los bordes lateroposteriores de los tergites y en los ster-

nites; pelo fino, amarillo, uniformemente distríbuido en el abdomen; primer

tergite con unos pocos pelos y algunas cerdas amarillas en los costados. Ge-

nitalia negra, cubierta por cortos pelos blancos dispersos; ovipositor con espi-

nas.

El nombre minusculus se refiere al tamaño diminuto de los individuos de

esta especie.

MEDIDAS. Largo total 2.8—3.6 mm, promedio 2.7 mm (typo 3.6 mm);

iargo de ala 2./—3.2 mm, promedio 2.9 mm (typo 3.2 mm); ancho de ala

1.0—1.3 mm, promedio 1.1 (typo 1.3 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 1% 19. LINARES: 19 (typo) El Radal

1100 m., Linares, Nov. 23-30, 1957, L. E. Peña (INCO). VALDIVIA: 1%

Rio Bueno, Dic. 19, 1917, P. Herbst (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 425.

Dasycyrton notocinereatum n. sp.

(Figs. 85, 494)

TYPO. ¿Z de Angol, Ene. 1954, L. E. Peña; este especimen está deposita-

do en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Oscuro, macho con abundante micropubescencia gris en el

área anterior de la sutura transversa, y micropubescencia dorada oscura en el

área posterior; hembra con micropubescencia dorada oscura en el área anterior

a la altura transversa y distintas líneas centrales y manchas laterales negras.

Abdomen con pelos cortos amarillos esparcidos sobre los tergites y pelos lar-

gos amarillos en los sternites. Patas negras con pelos amarillos mezclados con

algunos pelos negros. Alas fumosas.

1102 =

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: frente y cara

cubiertas por densa micropubescencia plateada; ocellarium negro, ocelos amari-

llentos; cerdas ocelares gruesas, largas y negras. Cabeza en vista lateral: an-

tenas (Fig. 85) negras, primero y segundo segmento con pelos negros, los cua-

les son mas largos en el costado ventral; barba rala, amarilla; cerdas occipita-

les negras, gruesas, ordenadas en 3-4 líneas donde se mezclan con pelos del

mismo largo y color; proboscis negra con pelos largos, amarillos en la parte

basoventral, pelos largos blancos en el medio o cortos y blancos en el ápice;

palpos maxilares negros con pelos amarillos dispersos. Protórax cubierto de

densa micropubescencia plateada y pelos amarillos dispersos; cerdas del coilar

indistintas. Mesopleura densamente cubierta de micropubescencia plateada,

mesopleura con 7 cerdas largas a lo largo del borde posterior; cerdas mesepi-

merales abundantes, amarillo oscuro. Mesonotum cubierto de abundante micro-

pubescencia, la cual es plateada antes de la sutura transversa y dorado oscu-

ro después de la sutura; líneas centrales y manchas laterales indistintas; pelos

del mesonotum negros y dispersos, mas largos cerca del borde posterior; scute-

llum, callos posteriores y humerales, vestidos como el mesonotum, pelos ne-

gros; 6 cerdas notop!eurales negras; 3 cerdas intraalares negras; 4 cerdas post-

alares negras; disco del scutellum sin pelos; 5 pares de cerdas scutelares largas

y negras; costados del postmesonotum con densa micropubescencia plateada,

sin pe-os. Alas fumosas, mas oscuras basalmente; venación alar como en todos

los Dasycyrton, pero R, con una vena trunca en la base (base de la vena

transversa sectorial). Coxas negras cubiertas como la mesopleura, con pelos

amarillo claros, los cuales son mas abundantes en la parte anterior de las

coxas anteriores; trocánteres, fémures, tibias y tarsos negros brillantes con pe-

los amarillos y cerdas amarillas, rojizas y negras. Tergites negro brillantes con

ref. ejos azulados, y áreas mas o menos triangulares en cada costado, cerca del

borde posterior; dorsum de los tergites con pelos amarillos cortos y dispersos;

sternites con micropubescencia plateada y pe.os largos amarillos abundantes.

Genitalla negra con pelos negros cortos, oculta bajo el tergite séptimo.

HEMBRA. Se diferencia del macho en que falta el color gris en el área

presutural, en su lugar tiene micropubescencia dorada oscura la cual deja

descubierta las líneas centrales y las manchas laterales; cerdas mesopleurales,

intraalares, supraalares, postalares y scutelares amarillas; mystax de pelos ama-

rillos y negros entremezclados; genitalia pequeña, café clara, telescopeada, con

pezos cortos amarillos; R, sin la vena trunca de la base; alas casi hyalimas.

El nombre notoc.neratum se refiere al color gris del área presutural del

mesonotum en el macho.

“— 103 —

MEDIDAS. Idénticas en los dos especimenes. Largo total 9.2 mm; largo

de ala 7.0 mm; ancho de ala 2.1 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 13 19. MALLECO: 1¿Z (typo) Angol,

Ene., 1954., L. E. Peña (INCO); 19 Angol, Ene. 1, 1951, R £ M. (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 494.

Dasycyrton papaverol n. sp.

(Eigs+ 91791)

TYPO. ¿, Los Angeles, Fdo. San José, Ene. 7, 1966, Fetis; este especimen

está depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad de Con-

cepción, Chile.

DIAGNOSIS. Muy próximo a D. tener (Bigot); cuerpo negro; cara dora-

da, mystax negro; pelos y cerdas de las coxas anteriores, abdomen, protórax

y mesepimerón negras; bordes lateroposteriores de los tergítes con bandas

plateadas; alas fumosas.

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: frente y ca-

ra cubierta de densa micropubescencia dorada; ocellarium negro con micropu-

bencia dorada dispersa, ocelos café rojizos; cerdas ocelares gruesas, largas y

negras. Cabeza en vista lateral: giba facial casi inexistente; mystax de pelos

negros dispersos ocupando la mitad basal de la cara; antenas (Fig. 81) negras,

dos primeros segmentos con micropubescencia dorada dispersa, pelos largos y

negros en el costado ventral, mas cortos y débiles en el lado dorsal; barba

negra, rala, de pelos cortos; área occipital con cerdas negras, gruesas, mezcla- .

das con pelos también negros, ordenados enfilas; vestidura del área postocu-

lar negra; proboscis negra, con unos pocos pelos finos negros en la parte basal

y pelos cortos blancos en el ápice; palpos maxilares negros, con algunos pocos

pelos blancos. Protórax negro, con áreas cubiertas de micropubescencia platea-

da; pelos y cerdas del collar negras. Mesopleura en su mayoría plateada, con

7—8 cerdas negras; cerdas mesepimeraies largas, gruesas y negras; mesonotum

con una banda central ancha negra, manchas laterales doradas oscuras, bordea--

das por una línea dorada clara; callos humerales y bordes laterales de dorado

claro; cailos posteriores negros, cubiertos de micropubescencia plateada; vesti-

dura del notum de pelos negros ralos, los cuales son mas largos en el borde

posterior; cerdas dorsocentrales indistintas; disco del scutellum con cubierta

semejante a los callos posteriores, sin pelos; cerdas notopleurales negras y grue-

sas; 4 cerdas intraalares negras y gruesas; 3 cerdas postalares negras y gruesas;

6 pares de cerdas scutelares negras y largas; costados del postmesonotum con

m'cropubescencia plateada; halteres amarillos. Alas uniformemente fumosas,

venas negras. Coxas negras con micropubescencia plateada, pelos y cerdas ne-

— 104 —

gras; fémures, tibias y tarsos negros brillantes, pelos y cerdas negras, solo los

cojinetes de las tibias y tarsos dorados; uñas negras brillantes. Abdomen ne-

gro brillante, cubierto de pelos negros cortos y ralos; costados de los tergites

con una banda plateada en los bordes posteriores; 5-6 cerdas negras grue-

sas en los costados de los tergites, contrastando con el fondo plateado de la

banda; sternites con pelos negros. Genitalia oculta por el tergite séptimo; dos

últimos segmentos y genitalia fuertemente telescopeados.

HEMBRA. Desconocida.

Esta especie es dedicada al Dr. Nelson Papavero, Curador de Dipteros del

Departamento de Zoología, Secretaría de Agricultura, Sao Paulo, Brasil.

MEDIDAS. Largo total 6.1—6.3 mm, promedio 6.2 mm (typo 6.3 mm);

largo de ala 4.6—5.1 mm, promedio 4.8 mm (typo 5.1 mm); ancho de ala

1.4-1.6 mm, promedio 1.5 mm (typo 1.6 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 33. BIO BIO: 13 [typo] Los Ange!es, Fdo.

San José, Ene. 7, 1966, Fetis (INCO); CAUTIN: 17 20 Km. E. of Temuco,

Ene. 8, 1951, KR.“ M. (GAS). MALELECO: 13" Eonquimay, Dic. 17, 1959

L. E. Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 491.

DISCUSION. El typo presenta color negro uniforme en todos los pelos

y cerdas; un paratypo (CAS) tiene algunos pelos y cerdas amarillas en las pa-

tas igual que en D. tener Bigot. Ambas especies son sin embargo constantes

en el color de las cerdas y pelos mesepimerales, abdominales y protoráccicos,

los cuales son negros en D. papaveros y amarillos en D. tener.

Dasycyrton sucinopedis n. sp.

(Fig. 80, 480)

TYPO. ¿, de Valparaíso, Dr. Reed; este especimen está depositado en

el Departamento de Zoología de la Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; abdomen con bandas doradas y plateadas en

los bordes lateroposteriores de los tergtes; mystax negro; fémures negros, con

el tercio apical café rojizo; tibias y tarsos rojizos; alas ligeramente café.

DESCRIPCION DEL TYPO. (¿). Cabeza en vista frontal: frente y cara

cubierta por densa micropubescencia dorada pálida; vertex oscuro, con mi-

cropubescencia rala; una mancha redonda pequeña, negra, sobre las antenas;

ocellarium negro, ocelos rojo oscuros; cerdas ocelares café oscuras. Cabeza en

vista lateral: cara plana, sin giba facial distinguible; mystax de cerdas negras

gruesas, la mayoría ordenadas en dos grupos cerca del borde oral; antenas

— 105 —

(Fig. 80) negras, primero y segundo segmentos con cerdas negras, mas largas

en el costado ventral; barba de pelos ralos café amarillentos; cerdas occipita-

les café claro, ordenadas en dos grupos a cada lado de vertex; ocellarium pro-

yectado posteriormente, cubierto de micropubescencia dorada y unos pocos pe-

los café claro; área postocular con vestidura semejante y con cerdas postocu-

lares cafés, cortas, ordenadas en dos filas; proboscis corta, negra brillante, con

pelos blancos, ralos en la base y pelos cortos blancos en el ápice; palpos ma-

xilares negros con pelos café. Protórax negro con micropubescencia dorada,

rala, pelos dorados; cerdas del collar café oscuros. Mesopleura negra con al-

gunas áreas de micropubescencia dorada; cerdas mesepimerales y mesopleura-

les amarillas oscuras. Mesonotum cubierto de densa micropubescencia dorada,

excepto sobre las dos líneas centrales y en las manchas laterales, las cuales

lucen negras brillantes; micropubescencia café oscura entre los callos humera-

les; callos humerales y posteriores con micropubescencia dorada, pelos del me-

sonotum dorados, ralos, mas largos en el tercio posterlor; disco del scutellum

cubierto parcialmente de micropubescencia semejante a la de la cara, sin pelos;

cerdas dorsocentrales distintas detrás de la sutura transversa (dañadas en el

typo); 3 cerdas notopleurales doradas; 1 o 2 cerdas intraalares doradas; 1 cer-

da postalar dorada; 1 (?) par de cerdas scutelares doradas; costados del me-

sonotum negro con micropubescencia rala, principalmente plateada. Alas café

claras, venas café. Coxas negras, con algunas áreas de micropubescencia do-

rada, pelos amarillos, mas abundantes en la parte anterior de las t'bias ante-

riores; trocánteres y los dos—tercios basales de los fémures negros brillantes;

tercio apical de los fémurcs, tibias y tarsos de color rojo ambarino; peios de

los fémures y tibias amarilos; cerdas en la parte negra de los fémures, de

color amarillas, en las partes rojizas, de color negro; cerdas de las tibias y los

tarsos negras, uñas negras brillantes. Abdomen negro; bordes lateroposter“o-

res de los tergites blanquecinos, cafés hacia los bordes laterales; tergites con

pelos ralos cortos y amarillos, mas largos en el primer tergite, mas 2—3 cer-

das amarillas; sternites negros brillantes con micropubescencia rala, café os-

cura, pelos semejantes a los de los tergites; últimos segmentos abdominales y

genitalia con largos pelos amar'llos. Genitalia pequeña, en su mayor parte

café claro; gonopodos negros, pelos cortos, amariilos.

HEMBRA. Desconocida.

El nombre sucinopedis se refiere al color rojo ambarino (rojo oscuro) de

las tibias, tarsos y parte apical de los fémures.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 7.8 mm; largo de ala 5.6 mm; ancho

de ala 2.1 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 13. VALPARISO: 13 (typo) Valparaíso,

Dr. Reed (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Mllustrada en Fig. 480.

— 106 —

Dasycyrton tener (Bigot) n. comb.

(Figs.72/"73,-79, 76, -84, 487)

Holopogon tenerum Bigot, 1878, p. 437, Chile; Stuardo, 1946, p. 80.

Holopogon tener Bigot. Huil, 1962, p. 177.

TYPO. Perdido. Un neotypo es designado en este trabajo, como un Y

de Caramávida, 1200—1400 m, Ene. 1-6, 1954, L. E. Peña; este especimen

está depositado en e; Departamento de Zoología de la Universidad de Concep-

cción, Chile.

DIAGNOSIS. Negro, pleura plateada; bordes lateroposterores del abdo-

men plateados; patas negras con pelos y cerdas amarillas, ralas, existen algunas

cerdas negras especialmente en la parte anterior de las tibias medianas; frente

y cara con abundante micropubescencia dorada; antenas negras; mystax ralo,

negro; alas uniformemente fumosas claras.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (3). Cabeza en vista anterior: frente

y cara uniformemente cubierta por densa micropubescencia dorada, ligeramente

menos abundanie en la base de las antenas y del ocellarium; ocellarium ne-

gro con micropubescencia dorada, rala, ocelos amarillos; cerdas ocelares lar-

gas, negras, cuatro de ellas gruesas. Cabeza en vista lateral: giba facial muy

baja, amarilla; mystax ralo, negro, con unos pocos pelos negros entremezciados;

tercio anterior de la cara sin imystax, tercio mediano con pelo ralo y tercio

inferior con pelo mas abundante; antenas negras, primero y segundo segmen-

tos con pe.os largos, gruesos y negros en el costado ventral, en el costado

dorsal con pelos negros y mas débiles; área occipital con una fila de largas

cerdas negras, gruesas, dispuestas a igual distancia, curvadas en el ápice, de-

trás de esta fila hay otra fila de pelos cortos, finos y negros; vestidura postocu-

lar de pelos blancos ralos, la parte superior mezclada con elementos occipita-

les; barba bianca rala; proboscis corta, megra brillante, con largos pelos blan-

cos ralos en la parte baso - ventral, y unos pocos pelos cortos blancos alrededor

del ápice; palpos maxilares negros, con pelos blancos ralos. Protórax negro bri-

llante, con algunas áreas plateadas y pesos blancos, los cuales son mas largos

y abundantes en los costados, en los lóbulos protoráccicos y en el collar; cer-

das del coliar indistintas. Mesopleura negra, en su mayor parte cubiertas con

micropubescencia plateada, 3 cerdas mesopleurales negras; cerdas mesepimera-

les abundantes, largas y amarillas; mesonotum negro con micropubescencia do-

rada poco densa, al igual que en los costados y alrededor de las manchas late-

rales; vestidura del mesonotum rala, negra, mas larga y ligeramente mas abun-

dante en el tercio posterior; líneas centrales del mesonotum indistintas; callos

humerales plateados, con pelos negros cortos; callos posteriores con áreas pla-

teadas y doradas entremezcladas, igual que sobre el disco del scutellum;

— 107 —

4 cerdas notopleurales negras; 2 cerdas intraalares negras y largas; 2 largas

cerdas postalares negras; disco del scutellum sín pelos; 5 pares de largas cer-

das scutelares negras. Costados dei postmesonotum plateados, sin pe-os. Alas

(Fig. 76) ahumadas, venas negras. Coxas negras, cubiertas por micropubescen-

cia plateada, pelos blancos, mas abundantes y largos en la parte frontal de

las coxas anteriores; trocánteres negros; fémures, tibias y tarsos negros, con pe-

los y cerdas blancos; tibias anteriores y medias con cerdas negras en el borde

frontal; tibias posteriores ligeramente dilatadas en el ápice; primer segmento

tarsal de las patas posteriores largo, engrosado, el resto de los segmentos en

forma de cuentas (sub redondeados) (Fig. 75). Uñas negras brillantes. Abdo-

men negro, tergites con escasos pelos blancos, los pelos son mas largos y

abundantes en los costados; tergites con áreas piateadas en los bordes latero-

posteriores; tergites con 6-8 pelos negros; sternites negros con escasa micropu-

bescencia plateada y largos pelos b:ancos ralos. Genitalia (Figs. 72, 73) ocul-

ta bajo el séptimo tergite.

HEMBRA. Semejante al macho; genitalia oculta bajo el séptimo tergite,

4 pares de espinas negras en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 5.7—7.3 mm, promedio 6.2 mm (neotypo 7.3 mm);

largo de aia 5.0—5.2 mm, promedio 5.1 mm neotypo 5.2 mm); ancho de ala

1.5-1.7 mm, promed'o 1.6 mm (aeotypo 1.7 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 193 y 79. ARAUCO: 2% (1 neotypo)

Caramávida, 1200—1400 m., Ene. 1-6, 1954, L. E. Peña (INCO); 592 (OTT);

63 (BRAS); 43 Peillem - Pilli, Cord':lera Nalhuelbuta, Arauco, Ene. 17, 1954

(OTTD); 13 (gen. prep.) Caramávida, Arauco, Ene. 1-6, 1954, L. E. Peña

(INCO); 1% Peillem - Pilli, Cordillera de Nahuelbuta, Arauco, 600—800 m., -

4,1954, L. E. Peña (1NCO). CONGEPCION:-1.''Bio-Bio,: 1902, Po Herbse

(GAS): MALLEGCO: 1.3. Cura, Cautin, Dic. 17, 11959 LE Pena (ONE

NUBLE: 1 50 km. E. San Carlos, Dic. 26, 1950, R.. Be M. (CAS)

(INGO);. 17 Los. cipreses, 1000: m., Ene. 19; 1955, LE.” Peña ((BRYAS]

SANTIAGO: 19 Cerro El Roble, Santiago, Dic. 28—31, 1963, L. E. Pena

(INCO); 19 Santiago, Jul., 1945, L. E. Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en fig. 487.

DISCUSION. D. tener (Bigot) es constante en forma, color y vestidura.

Las diferencias en el largo total se deben en su mayoría a distintos grados de

telescopeamiento de los tres últimos segmentos abdominales.

— 108 —

DASYPECUS Philippi

Dasypecus Philippi, 1865, p. 692; Hull, 1962, p. 139.

TYPO DEL GENERO, Dasypecus heteroneurus Philippi, 1865, designado por

Hull; 1962.

Cabeza en vista frontal dos veces más ancha que alta, vertex moderada-

mente hundido, oceliarium grande. Cabeza en vista lateral: área postocular

un -sexto del ancho del ojo; ojos globosos; cara plana, sin giba facial. Ante-

nas con el tercer segmento comprimido, ligeramente más largo que los dos

anteriores combinados y tan ancho como el segundo segmento; dos microseg-

mentos, el primero corto, el segundo 4-6 veces el largo del primero y la mi-

tad del largo del tercer segmento antenal. Mystax abundante, fino, con pelos

ligeramente lanosos, ocupando toda la cara, dirigidos principalmente hacia

adelante. Mesonotum negro brillante, sin manchas destacadas. Vestidura del

mesonotum de pelos cortos relativamente lanosos, ralos, distribuidos uniforme-

mente. Scutellurn con unos pocos pelos largos y finos; cerdas scutelares finas,

largas, generalmente de 12 a 18 pares dirigidas dorsalmente. Costados del post-

mesonotum desnudos. Celda marginal abierta; cuarta cerda poster or cerrada

lejos del borde del ala, sin pedúnculo que la conecte con el borde del ala;

M, ausente entre la celda discal y el borde del ala; R, aicanza ei borde

del ala antes del ápice, R, alcanza el borde del ala detrás del ápice; celda

anal cerrada antes de: borde dei ala, con un corto pedúnculo proyectándose

más allá de la celda pero sin alcanzar e: borde del ala; M, y m forman un

ángulo de 1409 (Fig. 66). Espinas de las tibias anteriores ausentes. Abdomen

ancho y deprimido. Alas extendidas más allá del término del abdomen.

Genitaiia de: macho rotada en 307; hypandr:um pequeño, en forma de placa;

epandria en forma de tenaza; gonopodos más cortos que los epandria. Geni-

talia de la hembra truncada, ligeramente telescopeada; acanthophorites con

espinas.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile, 1 especie, Dasypecus heteroneurus

Philippi.

DISCUSION. Dos especies han sido ubicadas en este género: Dasypecus

heteroneurus Ph'lippi y Dasypogon latus Philippi. D. heteroneurus sin duda

pertenece al género Dasypecus, pues posee las características de venación da-

das por Philippi en la descripción original. Esta especie fue la única descrita

por el autor en el género.

Bigot (1878:220) afirma que Dasypogon micans Philippi y Dasypogon la-

tus Ph lippi “no pertenecen a los verdaderos Dasypogon” y sugiere ubicarlos

en “Dasypecus Philippi, Schiner)?” debido a la falta de la espina en las tibias

frontales, la forma generai del cuerpo y “la primera celda posterior cerrada

— 109 —

lejos del borde del ala”. Desde entonces, Stuardo (1946) y Hull (1962)

ubicaron Dasypogon latus Philippi en el género Dasypecus y Dasypogon mi-

cans Philippi en el género Hexameritia Speiser.

La descripción de Philippi para D. latus es tan general que pueden ca-

ber en ella varias especies de Dasypogon, Hexameritia, y posiblemente también

Holopogon. El typo de D. latus se ha perdido, y no he podido reconocer esta

especie entre el abundante material estudiado en este trabajo.

Dasypogon micans ha sido mantenido en el género Hexameritia en este

trabajo.

Dasypecus heteroneurus Philippi

(Figs. 63, 64, 66, 463)

Dasypecus heteroneurus Philippi, 1865, p. 692, fig. 54, 54a, 54b; Bromley,

1932, p. 266; Stuardo, 1946, p. 81; Hull, 1962, p. 139, figs. 2525 y 2526;

Oldroyd, 1965, p. 351 - 355.

TYPO: Perdido. Oldroyd, 1965, designó como Neotypo a un GQ. Pai-

huano, Feb. 5, 1936, E. P. Reed; este ejemplar está depositado en el British

Museum (no visto).

DIAGNOSIS. Especie negra con bandas café rojizas en los bordes poste-

r'ores de los últimos 5 segmentos abdominales; pelos de la cabeza largos, abun

dantes, blancos y amarillos, igualmente abundantes y de iguales colores en los

costados del tórax y en los costados del abdomen; patas en su mayor parte

café claras con pelos blancos; alas hyalinas, vemas café claras; mesonotum

negro brillante con una mancha dorada a cada lado de los callos humerales

y una línea plateada en los bordes posteriores de cada callo.

HEMBRA. Cabeza en vista frontal (Fig. 64): cara y frente cubiertas por

micropubescencia plateada; ocellarium grande, negro, ocelos café claros; cer-

das ocelares no reconocib!es, pelos blancos sobre todo el ocellarium; vertex

negro. Cabeza en vista lateral (Fig. 63): giba facial pequeña, redonda, rojiza;

mystax blanco; antenas nacen inmediatamente arriba de la giba facial, primero

y segundo segmentos negros con pelos largos y blancos, tercer segmento ate-

nuado cerca del ápice, rojizo, oscuro en el tercio basal, con dos microsegmentos,

el primer microsegmento corto, un—=sexto del largo dei segundo, segundo mi-

crosegmento la mitad del largo del tercer segmento, negro rojizo con una

corta espina en el ápice; barba blanca; vertex y área postocular con abundantes

pelos blancos sín cerdas occipitales distintas; proboscis corta, ancha, café claro

con pelos blancos en la mitad basoventral y pelos cortos amarillos en el ápice;

palpos maxilares del mismo color que la proboscis, pelos amarillos. Prótorax

negro brillante, lóbulo protoráxico rojizo, con abundantes pelos blancos uni-

— 110 —

fcrmemente distribuidos sin cerdas en el collar. Pleura toráxica rojiza y negra,

mesopleura hinchada, rojza, los otros sclerites negros y rojizos, cubiertos con

micropubescencia plateada; mesop/eura con abundantes pelos largos amarillos,

los otros sclerites con pelos largos blancos ralos; no hay cerdas mesepime-

rales, en su lugar hay un denso mechón de pelos largos amarillos. Meso-

notum negro brillante, sin líneas centrales ni manchas laterales distintas,

cubiertas por pelos finos amarillos de tamaño mediano, ralos; una man-

cha de micropubescencia dorada en el dorso, cerca de cada callo hu-

meral, y una banda de m'cropubescencia plateada en los bordes pos-

teriores, debajo de los callos posteriores y en la notopleura; scutellum

negro brillante con pelos largos amarillos y ralos, semejante a los pelos del

me:onotum; cerdas dorsales ausentes; cerdas notopleurales intraalares y posta:

lares no d'stintas, en su lugar abundantes pelos gruesos largos y amarillos;

cerdas scuteliares ausentes, en su lugar una hilera de finos pelos largos amari-

los. Costados del postmesonotum negros con micropubescencia blanca y rala.

Alas (Fig. 66) brillantes, hyalinas, débilmente cafés en la mitad vasal, venas

café claras. Coxas café rojizo con algunas manchas negras, cubiertas de mi-

cropubescencia plateada, rala y peos blancos largos y ralos, los cuales son

más abundantes en el costado frontal de las coxas anteriores; trocánteres del

mismo color que las coxas; fémures café claro con áreas negras cerca del

ápice, en el lado dorsal y a ambos lados de la articulación con la tibia, cubier-

tos con pelos ralos largos y blancos sin cerdas; tibias y tarsos café claro,

último segmento tarsal oscuro en el dorso cerca del ápice, vestidura de pelos

largos y bancos, cerdas débiles largas y amarillas. Uñas negras con el cuarto

basal rojizo, pulvilos blancos con un friage a lo largo de los márgenes. Abdo-

men negro con bandas anchas, café rojizo en los bordes posteriores de los

terg'tes y sternites 2—8, cubiertos con pelos amarillos los cuales son más lar-

gos y más denscs en los costados. Ovipositor telescopeado, espinas en los

acanthophorites café claro.

MACHO. Semejante a la hembra; genitalia rotada 909, ligeramente cons-

treñida en la base y doblada ventra:mente, hypandium pequeño, rectangular.

MEDIDAS. Largo total 7.5—10.5 mm, promedio 9.2 mm (Neotypo 11.0

mm); largo de ala 5.0—7.2 mm, promedio 5.6 mm (Neotypo 8.0 mm); ancho

de ala 1.7-2.6 mm, promedio 2.0 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 29. COQUIMBO: 1¿g Vicuña, Ene.,

1937, Dr. Redd (INCO); 12 10 mi. W of Vicuña, Dic. 3, 1950, R. % M.

(Neotypo) (INCO). SANTIAGO: 1G 34 km. W. of Santiago, Dic. 19, 1950,

R. £ M. (INCO); 19 Las Melosas, Ene. 1, 1967. J. Moroni (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. llustrada en Fig. 463.

— 111 —

DISCUSION. Philippi, 1865, Pl. 28, fig. 54a, muestra una antena sin pe-

los en el primero y segundo segmentos; los especímenes estudiados tienen

pelos en esos segmentos. Un Y de Santiago mo posee la banda rojiza en el

borde posterior del segundo tergite. No existe indicación sobre la localidad del

typo en la descripción de Philippi. En este trabajo se anotan dos localida-

des, Vicuña y Santiago, a pesar de no haber referencias sobre localidades in-

termedias, en el mapa de distribución se ha llenado el espacio entre las dos

localidades. Las medidas del Neotypo son las dadas por Oldroyd.

DEROMYIA Philippi

Deromyia Philippi, 1865, p. 705; Williston 1901, p. 310; Artigas 1961, pp.

59, figs. 2,4 y 6; Hull 1962, p. 249.

TYPO DEL GENERO: Deromyia gracilis Philippi, 1865, designado por Wi-

lliston, 1901.

Cabeza en vista frontal dos- quintos más ancha que alta; vertex profunda-

mente excavado; oce-larium grande, ocellos grandes. Cabeza en vista lateral:

área postocular un - sexto del ancho del ojo; cara plana, sin giba facial. An-

tenas con el tercer segmento dilatado en el medio, comprímido, con un cot-

to microsegmento que lleva una espina en el ápice. Mystax de 4 cerdas lar-

gas y gruesas en el borde oral, las dos centrales son más gruesas. Mesonotum

con líneas centrales y manchas laterales. Mesonotum cubierto de micropubes-

cencia rala, luciendo más bien desnudo; cerdas dorsocentrales pequeñas pero

visibles. Scutellum con micropubescencia; sin cerdas scutellares. Costados del

postmesonotum con micropubescencia. Celda marginal abierta; cuarta celda

posterior aguda, cerrada y pedicelada; R, fuertemente curvada en su princi-

pio, algunas veces con una vena espúrea en la base, alcanza el borde del ala

en el ápice; R, alcanza el borde del ala lejos detrás del ápice; celda anal

cerrada, con un corto pedicelo; M, y m forman un ángulo de 909. Espina

de la tibia frontal presente. Abdomen angosto, largo, frágil. Alas ligeramente

más cortas que el abdomen. Genitalia del macho pequeña, rotada en 1509—

1809; hypandrium corto, triangular, conectado lateralmente con el epandrium

formando un anillo competo; epandrium dividido, globoso; gonopodos gran-

des, globosos; cercos grandes. Hembras con la genitalia truncada, con 5 pares

de espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION: Neotropical (Chile), 2 especies.

Este género está proximamente relacionado con los Dasypogoninae suda-

mericanos Mairolestes Curran y Senobasis Macquart y los Neolaparus Willis-

ton de distribución etiópica. Puede ser separado de Mirolestes por la presen:

=110=

cia de un microsegmento antenal que posee una espina en el ápice, en Miro-

lestes la espina apical está localizada en una hendidura en el ápice del tercer

segmento y no existe microsegmento (Fig. 248); se puede separar de Neola-

parus por la cuarta celda posterior que es cerrada y pedicelada, esta celda es

abierta en Neolaparus; de Senobasis puede separarse por la presencia del mi-

crosegmento y la espina ap:cal en el tercer segmento y la existencia de espi-

nas en el ovipositor, en Senobasis no hay microsegmento en la antena ni es-

pinas en el ovipositor. Deromyia puede ser confundida con Diogmites Loew,

pero este género posee un par de fuertes cerdas scutellares, las cuales están

simpre ausentes en Deromyia. Deromyia y Senobasis son semejantes en la ge-

nitalia del macho; el epandrium no está dividido y está fusionado lateralmente

con el hypandrium, formando un anillo completo; la genitalia de las hembras

es diferente, como se ha indicado anteriormente.

No hay antecedentes sobre ejemplares de Mirolestes Diogmites, Senobasis

o Neolaparus colectados en Chile.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE DEROMYIA

de Cara plateada; alas hyalinas; algunas cerdas en las tibias

medianas tan largas como el primer segmento tarsal; ma-

chos y hembras con el abdomen negro D. negriventris (Bigot)

les Cara amarilla o café; alas ahumadas en las hembras, café

oscura en los machos; cerdas en las tibias medianas no

más largas que el segundo segmento tarsal; hembras con

el abdomen en su mayor parte rojizo con una mancha

negra brillante en el segundo tergite, abdomen de los ma-

chos en su mayor parte negro ........ D. fuscipennis Blanchard

Deromyia fuscipennis Blanchard

(Eres pUIS, do. 176, 171, 178,441)

Deromyia fuscipennis Blanchard, 1852, p. 371; 1854, Pl. I fig. 6, 6a,b. San-

tiago; Walker, 1885, p. 771; Kertesz, 1909, p. 116; Bromley, 1932, p. 267,

Concepción; Stuardo, 1946, p. 82; Hu:l, 1962, p. 250; Carrera £ Papavero,

1962, p. 61, Caramávida y Peillem - Pilli.

Leoptogaster fascipennis (Blanchard). Philippi, 1865, p. 705.

Deromyta fascipennis (Blanchard). Philippi 1865, p. 706.

Deromyia gracilis Philippi, 1865, p. 706, Pl. 26, fig. 29 y 29a, Santiago;

Williston, 1901, p. 311; Stuardo, 1946, ñ. 82; Carrera, 1949, p. 5122;

Artigas, 1961, pp. 5-9, figs. 2, 4 y 6; Hull, 1962, p. 250, figs. 532, 1089

y 1098,

-TYPO: perdido. Se designa como neotypo a un G de Estero La Jaula.

Curicó, Ene. 1964, L. E. Peña; este ejemplar está depos'tado en el Departa-

mento de Zoo-ogía, Universidad de Concepción, Chile. El typo de D. gracilis

está perdido.

DIAGNOSIS, Cuerpo y patas delgadas (Fig. 173), café oscuro, tarsos en

mayor parte negros, cerdas negras, no más largas que el segundo tarsal; cara

dorada; pleura toráccica con micropubescencia plateada; alas café oscuras, ca-

si negras en los machos; mystax de 4 cerdas gruesas color café; abdomen de

las hembras rojizo, con una mancha negra en una elevación en la parte basal

dorsal del segundo tergite; motum con líneas centrales y manchas laterales bien

defin“das, café oscura; manchas laterales a menudo forman una línea completa.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (¿G). Cabeza en vista frontal; cara cu-

bierta con una densa m'cropubescencia dorada, en el centro lleva una línea

café en forma de V invertida; la mayor parte de la frente es negra brillante;

unos pocos pelos frontales finos de color café; ocellarium negro brillante, oce

los café claro; cerdas ocelares finas, cortas, café; mystax café. Cabeza en vista

lateral (Fig. 173); unos pocos pelos negros en ambos costados cerca del borde

oral; antenas (Figs. 177, 178) café oscuras, primero y segundo segmento os-

curo en sus partes distales, pelos café oscuro; tercer segmento ancho en el

centro, compr'mido, ligeramente más largo que los dos primeros combinados,

con dos pelos cortos en el lado dorsal y un microsegmento cónico con una

espina corta en el ápice; barba de unos pocos pelos finos, ralos, de color café,

semejantes a los de! área postocular; dos cerdas occipitaies gruesas, café, además

algunas cerdas más cortas en el occipucio y en el borde posterior de los ojos;

área postocular negra brillante, parcialmente cubierto por micropubescencia

dorada oscura, proboscis larga, negra brillante en los tres - cuartos apicales, ca-

fé claro en el cuarto basal con unos pocos pelos fnos café en el lado ventral

y pelos cortos cafés en el ápice; palpos maxilares café claro con pelos negros

en la mitad apical y pelos más claros en la parte basal. Protórax negro bri-

llante, con micropubescencia dorada y pateada en los costados, con algunos

pelos cafés en el lóbulo protoráxico; 6 cerdas delgadas, cafés, en el collar.

Pleura toráxica caté oscura con micropubescencia plateada y dorada, la micro-

pubescencia plateada es más abundante en la zona ventral, y se extiende

sobre las coxas medianas y anteriores; metepisterno desnudo en la mitad pos-

ter or; 5 cerdas mesep'merales delgadas, café. Mesonotum cubierto con micro-

pubescencia dorada oscura; líneas centrales fusionadas formando una ancha

banda café que se extiende a lo largo de todo el mesonotum, de color café,

manchas laterales café, fusionadas formando una banda ancha a cada costado

desde el callo humeral hasta el borde posterior, unos pocos pelos finos café

dispersos sobre mesonotum; 1 cerda postalar café; sin cerdas scutelares; scute-

llum ligeramente en punta hacia su parte posterior, café oscuro, parcialmente

—=114=

cubierto por micropubescencia dorada oscura. Costados del postmesonotum

café cubiertos con micropubescencia plateada. Alas (Figs. 173, 174) uniforme-

mente café oscuras, venas café oscuras casi negras. Coxas anteriores medianas

densamente cubiertas con micropubescencia plateada y pelos finos ralos, ama-

rillos, coxa posterior café oscura, parcialmente cubierta con micropubescen-

cia café dorada. Trocánteres, fémures, tibias y tarsos café oscuros, los pelos

de los fémures son ralos, blancos; en las tibias y en los tarsos, negros; cerdas

de las patas en su mayoría café no más largas que el segundo segmento tar-

sal (Fig. 173), algunas cerdas de los tarsos negras. Uñas negras. Abdomen

delgado; tergites café oscuro, casi negro en el dorso, bordes laterales café cla-

ros; sternites en su mayor parte café claros, con áreas oscuras; abdomen cu-

bierto con pelos cortos, ralos, los cuales son más destacados en los segmentos

5—8. Genitalia pequeña, negra, rotada en 1609, con pelos negros cortos; epan-

drium no dividido, formando un anillo completo con el epandrium, el cual

es triangular; gonopodos grandes, globosos; cerdos grandes (Fig. 175); funda

del pene con 2 procesos laterales, más cortos que el proceso mediano (Fig. 176).

HEMBRA. Similar al macho pero el abdomen rojo con una elevación ne-

gra brillante en la base del segundo tergite; las alas ligeramente café; patas

café rojizo. Ovipositor truncado con espinas rojizas en los acantóphorites.

MEDIDAS. Largo total 9.5—14.5 mm, promedio 12.5 mm (neotypo 11.5

mm); largo del ala 6.6—9.1 mm, promedio 2.6 mm(neotypo 2.8 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 623 y 1992. ARAUCO: 13 Contulmo, ne.

9, 1905, Schonemann S. (BERL); 23 Peillem - Pilli, 600—800 m, Cor. Nahuel-

buta, Ene. 13, 1954, L. E. Peña (OT); 13 Pichinahuel, 1100-1400 m, Cord.

Nahuelbuta, Ene. 31, 1954, L. E. Peña (OTT); 1 N9 25 Peillem - Pilli, 700=

1000 m, Arauco, Ene. 16, 1954 L. E. Peña (BRAS); 1g Llico, 1861 (JIM).

BIO - BIO: 13% Mulohen, Ene., 1926, F. Ruiz (INCO). CAUTIN: 1g 20

km. E. of Temuco, Ene. 8, 1951 R. £ M. (CAS). CONCEPCION: 13 Concep-

ción. Schonemann (BERL); 5gZ 22 Concepción, Ene. 1904, P. Herbst (3G

29 CAS; 239 USNM); 19 Concepción, 1903, P. Herbst (INCO). COLCHA-

GUA: 1% 19 Nancagua, Colchagua, Nov. 1944, L. E. Peña ES MA; 19

INCO). CURICO: 6gZ (1gZ neotypo) 19 Estero La Jaula, Curicó, Ene.

1964. E; E. Peña (27 12 INCO; 43 OTT); 1 Los Queñes, Estero La

Jaula, Curicó, Ene. 4—18, 1964, L. E. Peña (INCO); 1g El Coigo, Cord.

Curicó, Ene., 1961, L. E. Peña (INCO); 19 El Coigo, Curicó Ene., 1961, L.

E. Peña (OTT). LINARES: 13 Fdo. Malcho, Cord. Parral, Nov. 2—5, 1960,

Peña (INCO). MALLECO: 1¿G (gen. prep.) Angol, Dic. 31, 1929 (INCO);

1 Alto Nahuelbuta, 1460 m., Arauco - Malleco, Ene. 16, 1954, L. E. Peña

(OTT); 17 Angol, Dic., 1936, E. Brito (USNM); 1% Angol, Alto Nahuel-

buta, Ene. 6, 1930, (USNM); 13 Angol, Dic, 5, 1936, S. W. Bromley (USN M);

1 G Sierra de Nahueibuta, W. of Angol, 1200 m., Ene. 2, 1951 R. £ M. (CAS).

ÑUBLE: 17 40 km E. of San Carlos, Dic. 23, 1950, R. £ M. (CAS); 1 punta

— 115 —

iglesia, Ñuble, «Dic. 14, 1953,-L.. E. Peña (OTI): OHMIGGINS: 15 Peumgo;

Nov.,+ 1952, E. D.. B..((INCO); 14 Las. Nieves, Nov. 207 1947 MANCO NAS

Pangal, Ene. 3, 1964, Montero (CEE). SANTIAGO: 3gZ Chacabuco, Nov. 28,

1936, F. Ruiz (INCO); 3gZ 19 Poza Azul, Marga - Marga, Dic. 19, 1953 (23

Ig N9 124, Santiago, A. Faz (USNM); 1 Santiago, Junio 5, 1946, L. Peña

lolén, Ene. 8, 1964, Toro (CEE); 13 NQ 155, Santiago, 1923, A. Faz (USNM);

13 N9 124, Santiago, A. Fza (USNM); 1 Santiago, Junio 5, 1946, L. Peña

(MA); 13 Santiago, Julio, 1945, L. Peña (MA). TALCA: 27 N9 19 19 Las

Mercedes,, Ene. 3, 1933, F. Ruiz (INCO). VALPARAISO: 1 (presa) Salto;

Valparaiso ,Dic., 1928, Dr. Reed (INCO); 3gZ Valparaiso, E. P. Reed (1

INCO, 2 CAS); 19 Reñaca, Nov., 1922, Dr. Reed CAS). Localidad Incierta:

192 Candelaria (JIM); 1 Chir"dangue (JIM). Sin localidad ni Fecha:

kg 159 .(cópula). Chile;:;E...P.. Reed. (INGO);. LG¿Ghile, Dic 10; TOCA

Sandoval ((INCO); 19 Chile, E. P. Reed (INCO); :23 129 (INGCO); 19

NQ 69 Chile, 1922, A. Faz (USNM); 1 Chile, Scholtz S. (BERL); 3Z 29

Chile, E. C. Reed (USNM); 1,7 Chiie, Ene., 1942, E. P. Reed (GAS); 1169

(JTM). ARGENTINA: 19 Barlloche, Río Negro, Nov., 1926, R. £ E. Schan-

non (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 441.

DISCUSION. Todos los machos estudiados concuerdan con la descripción

de D. fuscipennis Macquart, y todas las hembras con la descripción de D.

gracilis Philippi. Estas dos especies han sido mantenidas separadas princ'pal-

mente por el color de las alas y del abdomen, el cual es sólo una diferencia

sexual; ambos son una sola especie que por prioridad debe ser denominada

fuscipennis. Un y y una 9 de la colección de E. P. Reed están clavados -

juntos en un m'smo alfiler, lo cual podría significar que fueron colectados en

cópula; estos dos ejempares muestran el dicromismo sexual indicado. Dos Q,

una de Río Negro, Argentina y otra de Concepción, Chile, tienen el abdomen

negro y el colo de las alas es más oscuro que el de otras hembras. Una 9 de

la colección PIM tiene una etiqueta manuscrita de Philippi: “Deromyia ru-

briventris Ph. n. sp.”; éste es un nomen nudum.

Deromy:a nigriventris (Bigot)

(Figs. 179, 180, 446)

Lochites n:griventris Bigot, 1878, nec nigriventris Philippi 1865, p. 427; Ker-

tes 909 pPZo:

Lochitomyia nigriventris (Bigot). Brethes, 1924, p. 105.

Senobas's nigriventris (Bigot). Williston. 1891, p. 75; Stuardo, 1946, p. 82;

Elull, 1962 <p. 422.

TYPO. g¿ Chile, NO 107 in Bigot Coll. Type Dip: 199 en Hope De-

partment of Etmology, Oxford University, Inglaterra (visto).

DIAGNOSIS. Pequeños, delgados, cara plateada; mystax de 4 cerdas finas

blancas; tórax con micropubescencia plateada, 3 líneas café oscuras en el dor-

sum; patas cafe oscuras en el lado dorsal, café claro en el lado ventral, al-

gunas cerdas tan largas como el primer segmento tarsal en las tibias medianas;

abdomen con tergites negros brillantes; alas hyalinas.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y la mayor parte de la frente cu-

b'ertas de densa micropubescencia plateada; ocellarium y áreas a ambos lados

de las antenas y una línea descendente bajo las antenas, negras brillantes, des-

provistas de micropubescencia; ocelos café oscuros; pelos frontales cortos, finos,

blancos; cerdas ocelares pequeñas, corrientemente café; mystax blanco. Cabeza

en vista lateral: antenas café, primero y segundo segmentos más claros, con

cortos pelos negros, tercer segmento comprimido, peciolado, tan largo como los

dos primeros segmentos combinados, con un corto microsegmento cónico que

lleva una espina en el ápice; barba, pelos de la proboscis y covertura postocu-

lar, £na, en su mayor parte corta, blanca; área postocular con micropubescen-

cia plateada; 2 cerdas occipitales café, bien destacadas; proboscis larga, negra

brillante, corrientemente café clara en la parte basoventral; palpos maxilares

café rojizos con pelos finos, blancos cerca del extremo. Protórax de dorsum ne-

gro, costados con micropubescencia plateada, unos pocos pelos blancos en los

lóbulos protoráccicos; 6—8 cerdas débiles, café, en el collar. Pleura toráccica

cubierta por micropubescencia plateada la cual es menos densa en el mesep's-

terno y en el metepimeron; 2-4 fimas cerdas mesepimerales blancas. Mesono-

tum cubierto de micropubescencia plateada y algunos pocos pelos finos, cortos

y blancos; líneas centrales café oscuras, fusionadas formando una ancha banda

que alcanza hasta el pronotum; manchas laterales café oscuras, algunas veces

con algo de micropubescencia dorada, corrientemente fusionadas formando una

banda ancha, por lo que el notum aparece con tres líneas anchas; vestidura

de los callos y el scutelium semejante a la del notum; 4 finas cerdas dorso-

centrales café; 1 cerda notopleural café; 1 cerda intraalar café; 1 cerda pos-

talar café; scutelium l'geramente en punta hacia el extremo posterior. Costa-

dos dei mesonotum cubiertos de densa micropubescencia plateada, semejante a

la de las pleuras toráccicas. Alas hyalinas, venas café oscuras. Coxas café cla-

ras cubiertas de micropubescencia plateada, la cual es menos abundante en

las coxas posteriores; algunos pelos blancos en los lados anteriores y externos

de las coxas, los que son ligeramente más abundantes en el costado anterior

de las coxas anteriores; trocánteres, fémures, tibias y tarsos café, más oscuros

en el dorso, fémures casi negros, al igual que los ápices de las tibias y los tar-

sos; fémures medianos con largas cerdas amarillas en la parte basoventral;

tibias medianas con cerdas largas, casi tan largas como el primer segmento

— 117 —

tarsal; cerdas de las patas de café negro; espina de las tibias anteriores ne-

eras brillantes. Abdomen largo, delgado; tergites negros brillantes, bordes late-

rales café claros; la mayor parte de los sternites café oscuros; vestidura abdo-

minal de pelos cortos, ralos y negros, más abundantes en los tergites 6-8, abdo-

men de apariencia desnudo. Genitalia pequeña, negra, rotada en 1609, cubier-

ta de pelos cortos negros; epandrium no dividido, fusionado lateralmente con

el hypandrium, formando un anillo completo; hypandrium triangular, gonopo-

dos grande, globosos; cercos grandes (Fig. 179); funda del pene con dos pro-

cesos laterales más cortos que el proceso mediano (Fig. 180).

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor con espinas rojas en los acan-

thophorites.

MEDIDAS. Largo total 7.8—10.6 mm (typo 10.0 mm); largo de ala

5,2—7.4 mm, promedio 6.2 mm (typo 7.7 mm); ancho de ala 1.4—2.1 mm,

promedio 1.7 mm (typo 1.9 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 6 y 79. ARAUCO: 19 Contulmo, Nov.

23, 1904, Schonemann S. (BERL). MALLECO: 13 Pehuenco, 1150 m., Ma-

lleco, Dic. 13—17, 1963, L. E. Peña (INCO). ÑUBLE: 29 Las Cabras,

1100—1480 m., Cordillera Chillán, Dic. 10—23, 1954, L. E. Peña (OTT); 13

Las. Trancas, Ene. 1723, 1958, L. E.. Peña (OTT); 03 - TQ 40 kms Esos

San Carlos, Dic. 23-24, 1950, R. £ M. (3Z 292 INCO, 23 59 CAS). Sin

localidad ni fegha: 13 (typo) NO 107 Bigot Coll., Dip: 199 (OXF).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 446.

DISCUSION. Es una especie uniforme que no muestra dicromismo sexual.

GRADOS TES Acad

Graptostylus Hull, 1962, p. 207.

TYPO DEL GENERO: Graptostylus dolosus Hull, 1962, por designación ori-

ginal.

Cabeza en vista frontal un - cuarto más ancha que alta; vertex moderada-

mente hundido; ocellarium bien desarrollado con 4 cerdas bien destacadas,

2 dirigidas dorsalmente y 2 hacia adelante. Cabeza en vista lateral: área pos-

tocular un - quinto del ancho del ojo; giba facial débi.mente desarrollada o

ausente. Antenas con el tercer segmento ligeramente más largo que los 2 pri-

meros combinados y con un pequeño microsegmento de forma semiesférica el

cual lleva un bien desarrollado stylo de un - tercio del largo del tercer seg-

mento. Mystax nace desde toda la superficie de la giba facial y se curva hacia

abajo después de la mitad. Mesonotum con líneas centrales y manchas latera-

les; vestidura del mesonotum de peio finos de tamaño mediano, los cuales son

más largos en la parte anterior; 5-8 pares de cerdas dorsocentrales bien des-

— 118 —

tacadas. Scutellum con pelos débiles, ralos, de tamaño mediano; 2—3 pares de

cerdas scutelares largas y gruesas. Costados del mesonotum cubierto de micro-

pubescencia; sin pezos. Celda marginal abierta; cuarta celda posterior abierta;

R, curvada hacia abajo y conectada al borde del ala en o detrás del ápice

del ala; R, alcanza el borde del ala lejos detrás del ápice del ala; celda anal

cerrada en el borde del ala o ligeramente abierta; M, y m forman un ángulo

de 909-1009, Espinas de las tibias anteriores ausentes. Abdomen adelgazado

cerca del extremo, algunas veces con una débil estrangulación entre el segun-

do y el tercer segmento. Alas extendidas más alla del término del abdomen.

Gen'talia del macho pequeña, rotada en 909; hypandrium corto, ancho, plati-

forme, con el borde posterior ligeramente hendiído y doblado en el ápice;

epandrium dividido en dos brazos, pero sin formar un forceps; gonopodos,

elípticos; cavidad genita] expuesta. Genitalia de la hembra disminuida hacia el

extremo y truncada, con 4 pares de espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 1 especie, Graptoslylus dolosus

Hull.

Graptostylus dolosus Hull

(Eres:565,. 07,08, 09,74, 14 291)

Graptostylus dolosus Hull, 1962, p. 208.

TYPO. ¿, Valparaíso, Ene. 25, A. Faz, en The United State National Mu-

seum (no visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo de'gado, gris, cerdas delgadas, largas y blancas;

mystax blanco; patas negras, tibias con largas cerdas finas y blanca, en las

tibias medianas algunas cerdas son tan largas como la mitad del largo de la

tibia; alas hyalinas, venas café; genitalia del macho pequeña.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y frente anchas, uniformemente

cubiertas por densa micropubescencia plateada; cerdas frontales blancas; oce-

llarium con vestidura semejante a la de la frente, ocelos café claros, rodeados

de una línea carente de micropubescencia; cerdas ocellares delgadas ,largas y

blancas. Cabeza en vista lateral (Fig. 65); cara convexa, pero sin giba facial

destacada, uniformemente cubierta de micropubescencia plateada; mystax blan-

co, los pelos centrales más largos, antenas oscuras, segmentos antenales y mi-

crosegmento cubiertos de micropubescencia plateada rala, la cual es más densa

en el primer segmento; primeros dos segmentos con pelos finos largos blancos;

tercer segmento ligeramente más ancho en el centro, comprimido, con un

diminuto microsegmento en el ápice y un stylo cónico de cerca de un - terco

del largo total del tercer segmento, con una espina en el ápice; las antenas

parecen poseer seis segmntos (Fig. 74); barba blanca; pelos occipitales blan-

—119-—

“cos; área postocular cubierta de densa micropubescencia plateada y pelos finos

blancos; proboscis negra, con pelos finos largos blancos en la parte basal y

pelos cortos blancos en el ápice. Protórax uniformemente cubierto de micro-

pubescencia plateada, rala, y pelos finos blancos dispersos; cerdas del collar

piliformes, blancas. Pleuras toráccicas uniformemente cubiertas de micropubes-

cencia plateada, pelos finos distribuidos uniformemente en la mesopleura; me-

sepimeron con cerdas blancas. Mesonotum y callos uniformemente cub'ertos

de micropubescencia plateada y pelos blancos cortos dispersos; líneas centrales

y manchas laterales ligeramente oscurecidas; disco del scutellum con vestidura

semejante a la del mesonotum; 7—8 finas cerdas dorsocentrales blancas, dis-

tribuidas a lo largo del mesonotum; 2 largas cerdas notopleurales blancas;

l larga cerda intraalar blanca; 2 largas cerdas postalares blancas; 2 pares de

largas cerdas scutelares blancas. Costados del postmesonotum uniformemente

cub“ertos por densa micropubescencia plateada. Alas (Fig. 69) hyalinas, venas

café oscuras. Coxas y trocánteres densamente cubiertos de micropubescencia

plateada, pelos finos, blancos, más abundantes en el lado frontalde las coxas

anteriores; fémures, tibias y tarsos negros, cubiertos de finos pelos blancos

ralos, los cuales son más largos en el borde ventral; cerdas largas y blancas,

algunas cerdas en las tibias medianas son más largas que las restantes, casi

la mitad del largo de las tibias (Fig. 68); algunas cerdas tarsales café oscuras

(Fig. 71). Uñas negras, cuarto basal rojo oscuro. Abdomen uniformemente

cubierto de micropubescencia plateada y finos pelos blancos, los cuales son

más largos en los costados de los 4 primeros tergites y sternites; 4 largas cer-

das en cada lado del primer tergite. Genitalia pequeña, negra, cubierta de

pelos blancos; hypandrium corto; epandria doblado ventralmente cerca del

ápice; gonopodos g-obosos (Fig. 67).

HEMBRA. Semejante al macho; tergites 8 negro brillante; ovipositor

truncado con espinas café claras o rojizas en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 10.1—13.5 mm, promed'o 12.2 mm; largo de alas

8. 7—11.0 mm, promedio 9.4 mm; ancho de ala 2.5-53.1 mm, promedio 2.8

mm.

MATERIAL EXAMINADO. 4S y 142. COQUIMBO: 42 El Pangue,

Las Trancas, Feb. 15, 1953 (2 MNHN, 2 INCO);; 3% 22 Lagunillas, Co-

quimbo, Marzo, 1956, L. E. Peña (1 29 BRAS, 23 INCO); 29 Peñuelas,

Mar, 22, 1953 (MNHN); 59 Playa Peñuelas, Feb., 1953 (3 MNHN, 2 INCO).

SANTIAGO: 13 Santiago, Puelma (BERL). Localidad Incierta: 1? Teatinos,

Ene. 15, 1953 (MNHN).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Lustrada en Fig. 457.

— 120 —

DISCUSIÓN. Es una especie constante. Los especímenes engrasados tie-

nen el mesonotum negro y los tergites rojizos oscuro. Unos pocos especíme-

nes poseen los fémures, tibias y tarsos café oscuros.

HEXAMERITIA Speiser

Eutrichodes Hermann, 1920, p. 190. Preocupado.

Hexameritia Spe'ser 1920. p. 447 (cambio de nombre); Bull, 1962, p. 82.

TYPO DEL GENERO: Dasypogon micans Philippi, 1865, por designación ori-

ginal.

Cabeza en vista frontal dos- quintos más ancha que alta; vertex muy

abierto. Cabeza en vista lateral: área postocular de la mitad del ancho del

ojo; giba facial ocupa cuatro - quintos de la cara. Antenas largas; tercer seg-

mento antenal más el m'crosegmento de una - y - media vez el largo de los dos

primeros segmentos combinados. Mystax abundante, los pelos en su mayor

parte dirigidos hacia adelante. Mesonotum cubierto de pelos uniformes, depri-

midos, los cuales son más densos en la parte anterior a la sutura transversa.

Dorsum del mesonotum negro brillante, sin manchas destacadas. Scutellum con

largos pelos finos dispersos; 10—15 pares de finas cerdas largas. Costados del

postmesonotum cubiertos de densa micropubescencia. Celda marginal abierta.

Cuarta celda posterior cerrada, pedicelada. Vena R, alcanza el borde del ala

antes del ápice del ala; R, llega al borde detrás del ápice. Celda anal cerra-

da, pedicelada. M, y m forman un ángulo de 950-1209. Espina de la tibia

anterior ausente. Abdomen dorsoventralmente deprimido, ancho. Alas alcanzan

el ápice del abdomen o se extiende ligeramente más allá de él. Genitalia del

macho pequeña, a menudo diminuta; ligramente rotada, corrientemente en

909; estructuras genitales escondidas bajo el séptimo tergite, el cual aprenta

ser el sexto desde una vista dorsal; octavo segmento abdominal rotado en

909 junto con la genitalia; epandrium formado por el noveno tergite, epan-

dria soldado basalmente a lo largo de la línea central; gonopodos cortos, glo-

bosos, con largos dististylus; aparentemente no hay epandrium.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 1 especie, Hexameritia micans

(Philipp).

Hexameritia micans (Philippi)

(Mies a 30 004 DS DO 0 Da 20) EL Ele)

Dasypogon micans Phil"ppi, 1865, p. 690, Santiago.

Euthrichodes micans (Philippi). Hermann, 1920, p. 190.

Hexameritia micans (Philippi). Hull, 1962, p. 82.

Dasypecus micans (Philippi). Bigot, 1878, p. 220; Stuardo, 1946, p. 81.

Dasypogon splendens Philippi, 1865, p. 690, Illapel; Stuardo, 1946, p. 82.

= 121 —

Hexameritia splendens (Philippi). Hull, 1962, p. 83.

Triclis tricolor Schiner, 1868, p. 162, Chile; Williston, 1891, p. 72, Stuardo,

1946, p. 81.

Hexameritia tricolor (Schiner). Hull, 1962, p. 83, figs 32, 420, 862 y 871.

TYPO: perdido. Se designa como neotypo a un ¿ de Cordillera Parral,

Nov. 11-25, 1960, L. E. Peña; este ejemplar está depositado en el Departa-

mento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile. Typo de Triclis tricolor

Schiner en Naturhistorischen Museum, Viena, Austria (visto). Typo de Dasy-

pogon splendens Philippi, perdido.

DIAGNOSIS. Cabeza más ancha que alta; abdomen dorsoventralmente

deprimido, ancho; cuerpo y patas negras cubiertas de pelos blancos y dorados;

alas café oscuras.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO. (G). Cabeza en vista frontal más an-

cha que alta; vertex muy abierto; frente negra, cubierta con abundante pelo

blanco; ocellarium negro brillante, ocelos café rojizos; frente plateada, centro

de la giba facial negro con micropubescencia plateada dispersa. Cabeza en

vista lateral (Fig. 34): giba facial moderada, redondeada; mystax negro, diri-

gido hacia adelante, ligeramente curvado hacia abajo; antenas negras; primer

segmento con largos pe:os blancos; segundo segmento con 5 cerdas negras,

Proboscis corta, negra, con algunos pelos cortos, blancos, en el ápice, y pelos

largos en la mitad basoventral. Occipucio con largos pelos blancos dirig'dos

hacia arriba; área postocular con abundantes pelos negros curvos; barba blan-

ca, entremezclada con unos pocos pelos negros en la parte superior; palpos ma-

xilares negros brillantes, cilíndricos, ligeramente puntudos, con pelos blancos

en sus partes basoventrales. Protórax negro; coliar con pelos lanosos negros;

pronotum con pelos negros; lóbulo protoráccico con abundantes cerdas negras.

Mesotórax negro brillante; mesopleuron con áreas cubiertas de micropubescen-

cia plateada; áreas anteriores del sternop“eurón con un mechón de pelo blan-

co; cerdas mesepimerales blancas. Mesonotum negro brillante con refiejos azu-

lados; líneas centrales y manchas laterales ausentes; área dorsal cubierta

uniformemente de pelos blancos amarillentos; callos humerales con un denso

mechón de pelos blancos; callos posteriores con 2—3 cerdas largas y 5—7 más

cortas, todas blancas; scutellum del mismo color que el mesonotum; cerdas

dorsocentrales, notopleurales, intraalares y postalares indistintas; disco del scu-

tellum con pelos largos amarilios dispersos, los cuales son más cortos y más

abundantes a lo largo del margen anterior; cerdas scutelares abundantes, lar-

gas, amarillas, semejantes a los pelos del disco del scutelium; costados del post-

mesonotum cubiertos de fina micropubescencia blanca. Alas (Fig. 35; unifor-

memente coloreadas de café oscuro; el pedúnculo que cierra la celda anal

mucho más corto que el pedicelo que cierra la cuarta celda poster:or. Coxas

cubiertas de fina micropubescencia plateada; parte anterior de las coxas con

pelos blancos, los cuales son más abundantes en las coxas anteriores; fémures

anteriores con abundantes pelos blancos dorados, entremezclados con pelos ne-

gros, los cuales son más abundantes en el lado dorsal, no hay cerdas en los

fémures; fémures medianos semejantes a los fémures anteriores, pero los pelos

del costado dorsal menos abundantes; fémures posteriores con pelos blanco

dorados; tibias anteriores con pelos blanco - dorados entremezclados con algu-

nas finas cerdas de mayor largo; tibias medianas y posteriores con vestidura

semejante; tarsos negros con cortos pelos blancos dispersos y largas cerdas ne-

eras; lado ventral de los tarsos y de las tibias anteriores y posteriores cubier-

tos de cortos pelos dorados comprimidos, éstos son menos densos en las tibias

posteriores; uñas negras. Abdomen ancho, dorsoventra!mente deprimido, negro

brillante; costados laterales y dorsales de los tergites cubíertos con pelos blan-

cos, los cuales som más largos en los costados; los tres últimos segmentos abdo-

minales con pelos dorados, más largo en los costados (Fig. 38); el último

tergite con unos pocos pelos en el dorso; sternites con largo pelo amarillo

o dorado, semejante, a los de los costados de los tergites. Genitalia y últimos

segmentos ocultos por el tergite sexto; estructuras genitales en Figs. 36, 37, 39.

HEMBRA. Semejante al macho, vestidura dorsal del abdomen rala; ovi-

pos:tor como se muestra en Figs. 40, 41.

MEDIDAS. Largo total 8.5—9.5 mm, promedio 9.0 (neotypo 9 mm); lar-

go de ala 5.2—6.1 mm, promedio 5.6 (neotypo 5.7 mm); ancho de ala

1.5-2.2 mm, promedio 1.8 mm (neotypo 1.7 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 41 y 529. ACONCAGUA: 17 Pedegua,

Nov. 28, 1950, R £ M. (CAS). BIO - BIO: 19 Bío-Bío, E. C. Reed (USNM).

CONCEPCION: ¡9 Yumbel, Nov. 26, 1950, Cid (INCO). COQUIMBO:

338 9” Mincha, Jul., 1955, LL. E. Peña (BRAS). CURICO: 13 19 “Estero

Cabrera, Curicó, Feb. 9, 1961, L. E. Peña (INCO). LINARES: 27 (1 neotypo)

3Q Cordiilera Parral, Nov. 11-25, 1960, .L. E. Peña (INCO); 5Q Nov.

11-25, 1960, L. E. Peña (INCO); 59 Nov. 26-28, 1960, L. E. Peña (INCO»;

273 259 Dic. 1-8, 1960, L.E. Peña (INCO); 6% La Bolsa, Cordillera Pa-

rral, Nov. 26-28, 1960, L. E. Peña (INCO); 13 Las Cruces, Cordillera Pa-

tral, Die? 1214... 1960; L.: E: Peña: (1NGO);-1:9. Longaví;: Dic. -1,. 1899;.-8,

Schonemann (BERL); 19 Dic. 15, 1899, S. Schonemann (BERL); 23 Ville-

ga, Cordillera Parral, Dic. 1-8, 1960, L. E. Peña (INCO). ÑUBLE: 39

50 km. E. of San Carlos, Dic. 26, 1950, R. £ M. (CAS). O'HIGGINS: 13

29/MPeumo;, Nov: 1952, E. DB (INCO);: “1 (gen. “prep:) ''Nov., “1952,

ESNDIB. (1INGO); -1*9"Eeb. 6; 1952-16 O "O “(INCO). “SANTIAGO: 2150

N0 8320 Santiago, Dr. Puelma (BERL). VALPARAISO: 13% Valparaíso, R.

Novara (typo de Triclis tricolor Schiner) (WIEN). Sin localidad ni fecha: 1G

49 Chile, E. P. Reed (CAS); 17 (JIM).

— 123 —

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 474.

DISCUSION. H. micans es constante en color y en vestidura; pequeñas

variaciones de tamaño se anotan en las mediciones. Luego de estudiar una

serie de 273 y 259 de Cordillera Parral, Dic. 1-8, 1960, se ha encontrado

que todos los machos concuerdan con la descripción de H. micans (Philippi)

y todas las hembras con la descripción de H. splendens (Philippi), al estu-

diar el resto del material se encontró que este hecho se mantenía constante;

ambos son sinónimos. H. micans ha sido cons derado el nombre válido de la

especie pues aparece en un párrafo anterior en la misma página (ambas es-

pecies fueron descritas en la misma página).

Machos y hembras son difíciles de separar debido a que la genitalia de

ambos sexos se encuentra retraída bajo el tergite séptimo (aparentemente el

sexto). Ambos sexos pueden ser fácilmente separados por la covertura de los

tergites adbominales, la cual es abundante, blanca y dorada en los machos y

rala y blanquecina en las hembras. Ambos sexos poseen largos pelos en los

costados de los tergites.

AYPENETES: Loécw

Hypenetes Loew, 1858,.p. 349; Hull, 1962, p. 152.

Clavator Philippi, 1865, p. 699.

TYPO DEL GENERO: Hypenetes stigmatias Loew, 1858, por monotypía.

Cabeza en vista frontal un - cuarto más ancha que alta; vertex moderada-

mente hund:do; ocellarium bajo. Cabeza en vista lateral: área postocular la

mitad del ancho del ojo; giba facial blen desarrollada, corrientemente promi-

nente, ocupando desde la mitad hasta tres - cuartos de la cara; tercer segmen-

to antenal clavado hacia el ápice, desde un - cuarto hasta la mitad basal en

forma de pedúnculo, microsegmento corto y cilindrico, con una corta espina

terminal; mystax formado por largos y gruesos pelos o con gruesos pelos o

gruesas cerdas en la parte superior y finos pelos en la parte inferior (asilifor-

mis). Mesonotum con líneas centrales y manchas laterales ben destacadas; ves-

tidura de pelos ralos de tamaño mediano a largo; cerdas dorsocentrales co-

rrientemente bien diferenciadas de la vestidura pilosa. Scutellum con pelos fi-

nos y 3—7 pares de cerdas scutelares. Costados del postmesonotum con micro-

pubescencia, sin pelos. Celda marginal y cuarta posterior abiertas; R, alcanza

el borde del ala antes del ápice, R, alcanza el borde del ala detrás del ápice;

celda anal ab'eria, corrientemente angosta hacia el borde del ala; M, y m

forman un angulo de 950-1159. Espina de la tibia anterior ausente. Abdo-

men cilíndrico. Alas corrientemente alcanzan el extremo del abdomen. Geni-

talia de los machos rotada en 1500 - 1809; hypandrium grande, posteriormente

=— 124 —

puntiagudo, con o sin espinas en el ápice; epandrium grande, completamente

dividido, en forma de forceps; abdomen de las hembras truncado en el ápice,

ligeramente atenuado, con seis pares de espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Etiópica y Neotropical, 11 especies; 9 especies en Chile.

Hull (1962:154) creó el subgénero Tillobroma para las especies sudameri-

canas de Hypenetes y designó a Hypenetes punctipennis (Clavator punctipe-

nnis Ph lippi) como typo del subgénero. De las ocho especies anotadas por

Hull para la región neotropical, solo asiliformis Wulp, obtusus Engel y punc-

tipennis Philippi pertenecen al género Hypenetes (Tillobroma); nigribarbis

Philippi, rubrcornis Philippi y rufrescens Philippi corresponden al género

Creolestes Hull; no he estudiado fulvicornis Macquart 1846 (no fulvicornis

Macquart 1849) (ver discusión en Hypenetes schineri mn. sp.).

Las 3 especies conocidas y las 6 muevas especies presentadas aquí son se-

mejantes; variaciones presentadas por la vestidura pilosa son a menudo útiles

para separarlas; el color de la antena, forma del tercer segmento antenal y

color de las tibias además de la distribución de las cerdas, son caracteres útiles

para identificar ambos sexos. Los caracteres definitivos para separar las especies

son los proporcionados por las estructuras genitales de los machos, espec:al-

mente el extremo del hypandrium, el proceso distal de los gonopodos y la

forma de la funda del aedeagus.

La especie Hypenetes obtusus, faciimente reconocible por el tercio basal

de las alas lechoso y el resto con pequeñas manchas café, no ha sido encon-

trada en la región Chilena; se le ha encontrado en Argentina, Brasil y Perú.

La clave propuesta a continuación es útil para separar las especies chile-

nas de Hypenetes; las hembras de H. dav:dsoni n. sp. y H. digitatus n. sp.

no pueden ser separadas por sus caracteres externos, las he separado por aso-

ciación con los machos.

CLAVE PARA LAS ESPECIES CHILENAS DE HYPENETES

d: Mystax formado por cortas cerdas negras y gruesas en su

parte superior y finos pelos blancos en la parte inferior;

patas cubiertas con notorios pelos blancos en la parte in-

patas cubiertas con notorios pelos blancos aplastados sobre

la superf “cie; genitalia de los machos según Figs. 88-91 ........

EII A O EE a H. asiliformis (Wulp)

qn, Mystax en su mayor parte formado por largos pelos negros

uniformes, todos ellos negros o negros en la parte supe-

rior y blancos en la parte inferior; patas cubiertas con

pelos finos, todos blancos o negros y blancos entremez-

A E e E A E e A

6%.

Fémures posteriores con 8 o más cerdas negras y gruesas en

la parte ventral cerca del ápice; genitalia masculina ilus-

trada en "Elgs. LS AE AI TA A ÓN

A AN ETA OA, dq MRS y Al H. punctipennis (Fhilipp:)

Fémures posteriores con menos de 3 cerdas gruesas en el lado

ventral: ate cr cade topo lo io

Tibias rojizas; antenas negras; abdomen negro azulado bri-

llante con áreas blancas en los costados, una clara línea

en el borde posterior de los tergites; genitalia masculina

segun” ilustración "en Figs 102 106107 OI

A E O H. fucosus n.

Sin la combinación de caracteres anotados arriba ..................

Tercer segmento antenal con la mitad basal en forma de

pedúnculo, la mitad apical en forma de clava (Figs. 101,

Dt at Eto

Tercer segmento antenal con el tercio basal o menos del

tercio en forma de+pedunculos (Fig. 087) 2 o

Tercer segmento antenal negro; tibias anteriores y medianas

con casi todas las cerdas negras; genitalia de los machos

según ilustración en Figs. 108, 110-112 ... A. magellanicus n.

Tercer segmento antenal (por lo menos la clava) rojizo (al-

gunas veces solo parte de ella); tibias anteriores y media-

nas con abundantes cerdas rojas y largas entremezcladas

COM EEE

Cuerpo de color café claro com abundantes áreas de micro-

pubescencia dorada; tibias anteriores rojizas; genitalia mas-

culina según Figs. 119-122; hypandrium con 2-4 espinas

gruesasicates enel pr e o H. schineri n.

Cuerpo negruzco, con áreas de micropubescencia gris; tibias

anteriores corrientemente negras, algunas veces café; hypan-

drium con o sin 2 gruesas espinas negras en el ápice ..........

Genitalia masculina según Figs. 94, 96 y 99 ...... H. davidson: n.

Genitalia masculina según Figs. 100, 103-105 ...... H. digitatus n.

Apice del hypandrium agudo; genitalia masculina como en

las Figs. 92, 93, 95 y 97; cerdas en las tibias posteriores en

su mayoría TOJiZAS tn HTDCRESi me

— 126 —

sp.

8% Apice del hypandrium en forma de espátula con una muesca

en el borde posterior; genitalia masculina como en las

Figs. 124, 126, 127 y 129; cerdas de las tibias posteriores

En FS Amayora MEBras cas reia apio H. velentinel n. sp.

Hypenetes asiliformis Wulp

(Figs. 87 - 91, 504)

Hypenetes asiliformis Wulp, 1882, p. 101, Argentina; Bromley, 1932, p. 264,

Argentina; Hull, 1962, p. 154.

TYPO. ¿£¿ de Argentina (Weyenbergh), localidad desconocida (no visto).

DIAGNOSIS. Cabeza y cuerpo con abundante micropubescencia gris y

dorado pálida; mystax de cerdas gruesas y cortas en la parte superior, en la

parte inferior con densos pelos blancos finos; patas cubiertas con abundante

pelos gruesos blancos aplastados.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y frente cubierta con densa mi-

cropubescencia plateada, ligeramente amarila en la cara; pelos frontales en

su mayoría o todus ellos blancos; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista late-

ral (Fig. 87); giba facial gris oscura; mystax de gruesas cerdas negras en la

parte superior y pelos finos blancos en la parte inferior; antenas totalmente

negras, pelos de las antenas bancos; barba b:anca; vestidura postocular y occi-

pital, blanca; proboscis y palpos maxilares negros con pelos blancos. Protórax

con micropubescencia dorada oscura y algunos pocos pelos blancos. Pleura

toráccica con grandes áreas de densa micropubescencia dorada y algunos pelos

blancos; cerdas mesepimerales bancas. Mesonotum uniformemente cubierto

por micropubescencia dorada clara, en las líneas centrales y en las manchas

laterales, ligeramente café, la vestidura es de gruesos pelos blancos dispersos;

scutellum semejante en color y vestidura al mesonotum; 6-7 cerdas dorsocen-

trales gruesas y negras; 2 cerdas notopleurales color café oscuro o negras; 1-2

cerdas intraalares negras; 2 cerdas postalares negras; 3 pares de gruesas cerdas

scutelares negras. Costados del postmesonotum con micropubescencia amarilla.

Alas hyalinas, venas negras. Coxas con covertura semejante a las pleuras to-

ráccicas, con pelos blancos, más abundantes en la parte anterior de las coxas

anteriores; fémures negros, tibias y tarsos rojizo oscuro; patas densamente cu-

biertas con pelos blancos, gruesos, deprim'dos; cerdas blancas, ligeramente ca-

fé en los tarsos y algunas pocas en las tibias. Abdomen con micropubescencia

gris; costados de los tergites negros, en parte con micropubescencia dorada

oscura; vestidura de finos pelos blancos ralos. Genitalia (Figs. 88 - 91) negra,

con abundantes pelos blancos comprimidos; 2 espinas en el ápce del epan-

drium; funda del aedeagus según Figs. 90 y 91.

— 127 —

HEMBRA. Semejante al macho; espinas del ovipositor negras.

MEDIDAS. Largo total 8.7 mm; largo del ala 5.9 mm; ancho del ala

1.6 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 2% y 19. MAGALLANES: 23 (1 gen.

prep.) Laguna Amarga, Natales, E. del Mt. Payne, 200 m., Dic. 14-20. 1960,

Peña (INCO); 192 Bahía Municiones, Estrecho de Magallanes, 'T. del Fue-

go Dic; 10, 1960 "E. Peña (UNICO)

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 504.

DISCUSION. Esta especie se diferencia de todas las otras especies del

género Hypenetes por las características del mystax.

Hypenetes critest n. sp.

(sI IAS)

TYPO. ¿Z, de Balmaceda, Aysen, Ene. 6, 1961, L. Peña; este especimen

está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción,

Chile.

DIAGNOSIS. Tercio basal del tercer segmento antenal en forma de pe-

dúnculo; tibias negras; abdomen negro brillante con grandes áreas triangulares

blancas en los costados de los tergites; genitalia del macho según Fig. 92,

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara y frente

con micropubescencia gris oscura; pelos frontales negros; cerdas ocelares largas,

negras. Cabeza en vista lateral: giba facial negra; mystax negro; antenas total-

mente negras, pelos en los primeros y segundos segmentos, negros en el costa-

do dorsal y blancos en el costado ventral; tercio basa| del tercer segmento

antenal en forma de pedúnculo; barba blanca; pelos en la parte ventral de la

proboscis y en los palpos maxilares, blancos y finos; área postocular con mi-

cropubescencia gris y peios negros. Protórax con micropubescencia dorada y

plateada además de fimos pelos blancos, los que son más abundantes en los

lóbulos protoráccicos. Pleura toráccica con micropubescencia rala, dorada en

la mitad superior y plateada en la mitad inferior; cerdas mesepimerales ne-

gras. Mesonotum con áreas dispersas de micropubescencia dorada; micropubes-

cencia plateada en el área posterocentral, scuteilum, entre las líneas centrales

y las manchas laterales, y en la sutura transversa; líneas centrales y manchas

laterales café oscuro; pelos negros; 7-9 cerdas dorsocentrales negras de tama-

ño moderado; 2 cerdas notopleurales negras; 2 cerdas intraalares negras;

3-5 cerdas postalares negras; pelos del scutellum negros y finos, 3-4 pares de

cerdas scutelares negras. Costados del postmesonotum con micropubescencia

plateada y finos pelos blancos, más abundantes en el lado anterior de las co-

xas frontales; fémures, tibias y tarsos negros con finos pelos, algo comprimi-

dos en las tibias y los tarsos, erectos en los fémures posteriores con 2 cerdas

en los costados y 1 en la parte ventral cerca del ápice; abundantes cerdas

en las tibias; cerdas de las patas en su mayoría rojizas, unas pocas blancas,

más oscuras en los tarsos. Abdomen negro brillante, con un área blanca trian-

gular en cada costado de los tergites 2-6, y que se continúa en forma de

una línea a lo largo del borde posterior de cada tergite; una banda, poco de-

finida de micropubescencia dorada oscura, sobre la línea mediodorsal del

abdomen; cubierta de finos pelos blancos, más largos en la parte ventral; 3

débiles cerdas negras en los costados del primer tergite. Genitalia (Fig. 92, 93)

rojiza, con cortos pelos blancos sobre el hypandrium, pelos más largos, en su

mayoría negros sobre los gonopodos y los epandria; funda del pene según

Big 09.y 97.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor con espinas negras.

Esta especie es dedicada al Dr. John L. Crites del Departamento de

Zoología y Entomología, The Ohio State University.

MEDIDAS. Largo total 9.5-10.9 mm, promedio 8.8 mm (typo 8.9 mm);

largo del ala 6.5-8.0 mm, promedio 6.9 mm (typo 6.5 mm); ancho del ala

2.1 -2.4 mm, y promedio 2.2 m (typo 2.1 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 273 y 189. ARAUCO: 1% Pichinahuel,

Cord. Nahuelbuta, 1100-1400 m., Ene. 31, 1954, L. Peña (OTI). AYSEN:

43 (1 typo) 292 Balmaceda, Aysen, Ene. 6, 1961, L. Peña (29 192 INCO;

13 OTT) 13 Rio Simpson, Aysen, Mar. 1-9, 1962, Peña (OTT). BIO - BIO:

13 Santa Clara, Dic. 8, 1963, F. Mendez (INCO). CAUTIN: 47 59 20 km.

Pedemtemuco,. Ene. E, 1951, R.de ¿M. (13. To. INCO; 23 49. CAS.

CURICO: Lo Cord. Curicó, Feb. 9, 1961, Peña (INCO). LINARES; 1G

Fdo. Malcho, Cord. Parral, Nov. 11-20, 1964, L. E. Peña (INCO). MALLE-

CO: 23 (gen. prep.) Laguna Gayetué, Ene. 9-12, 1962, Peña (INCO); 2G

29 Lonquimay, Feb. 6-21, 1962, Peña (INCO); 27 22 Lonquimay, Ene.

9, 1962, Peña (INCO); 1. La Fusta, Cord. Lonquimay, Feb. 6-21, Peña

(INCO); 1 Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol, 120 m., Ene. 2, 1951 (CAS);

23 Sierra Nevada, Cord. Lonquimay, Ene. 1-5, 1962, Peña (INCO).

ÑUBLE: 17 50 km. E. of San Carlos, Ñuble, Dic. 26, 1950, R. £ M.

(INCO). VALDIVIA: 33 (1 gen. prep.) 22 y 19 (gen. miss.), Enco, Val-

divia, 120 m., Mar. 4-9, 1950, L. E. Peña (27, 1 ( gen miss.) y 19 BRAS;

13 (gen. prep.), 17 12 INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 428.

DISCUSION. Las hembras de esta especie presentan serias dificultades

para ser separadas de las hembras de H. valentinei n. sp. En H. critesi las

— 129 —

cerdas de las patas son corrientemente en su mayoría rojizas o blanquecinas,

mientras que en valentinel son corrientemente negras. Especimenes de locali-

dades del norte de la zona de distribución (provincia de Linares) tienen la

cubierta pilosa del centro del abdomen casi tan larga como la de la parte

ventral, mientras que los especímenes de las áreas más al sur (provincia de

Aysen [typo]) tienen los pelos del dorso ciaramente más cortos. Algunos ejem-

plares de esta especie tienen las tibias ligeramente rojizas. Las m'cropubescen-

cia dorada en el dorso del abdomen es poco notable en algunos especímenes;

en algunos el abdomen es menos negro brillante que en el typo. Los proce-

sos distales de los gonopodos pueden en algunos ser menos puntudos en la

parte distal que lo: mostrado en la Fig. 92.

Hypenetes davidson: n. sp.

(Bes: 94 96, 98/99/5420)

TYPO. ¿Z, Cauquenes, Abril, 22, 1900, Schonemann S.; este ejemplar está

depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción,

Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo con abundante micropubescencia gris; tercer seg-

mento antenal con la mitad basal en forma de pedúnculo, negro, la mitad

apical en forma de clava, rojiza; hypandrium con 2 cortas espinas en el ápice;

t bias anteriores corrientemente negras; tibias anteriores y medianas con abun-

dantes cerdas rojizas largas.

DESCRIPCION DEL TYPO (G¿). Cabeza en vista frontal: cara y frente

gris oscuras, casi negras; pelos frontales en su mayoría blancos, 1-2 pezos ne-

gros entremezciados en los costados. Cabeza en vista lateral: giba facial oscura;

antenas café oscuro, mitad apical del tercer segmento antenai rojizo, mitad

basal en la forma de pedúnculo, negro; pelos blancos en los primeros y segundos

segmentos; cerdas ocelares finas, largas y negras; mystax denso, formado por

pelos en su mayoría negros y largos, con varios pelos finos y blancos entre-

mezclados en la parte inferior; barba blanca; pelos en la parte ventral de la

proboscis finos y blancos, en el ápice pelos cortos amarillos; pa'pos maxilares

negros, pelos blancos; área postocular negra con micropubescencia dispersa,

gris, cubierta de abundantes pelos f'nos y blancos, más largos en cada lado

del vertex. Protorax con micropubescencia plateada y fimos pelos blancos,

más denso en los ¡óbulos protoráccicos. Pleura toráccica con grandes áreas de

micropubescencia plateada y pequeñas áreas de micropubescencia dorada en

las pleuras y mesepimera, los pelos dispersos, fínos y blancos; cerdas mesepi-

mera:es blancas. Mesonotum y scutellum cubierto en parte por micropubes-

cencia plateada, la cual es dorada en los costados de las líneas centrales: lí-

neas centrales y manchas ¡aterales café oscuras; cubierta pilosa negra; pelos

finos blancos en los callos humerales y posteriores, y en el scutellum; 12-14

cerdas dorsocentrales largas y negras, no claramente diferenciadas; 3 cerdas

notopleurales negras; 2 cerdas intraalares negras; un grupo de 9-12 finas

cerdas postalares negras; 4 pares de cerdas scutellares. Costados del postmeso-

notum con micropubescencia plateada. Alas hyalinas; venas café claro, más os-

curas hacia el borde posterior. Coxas con densa m'cropubescencia plateada y

pelos blancos, los pelos, más abundantes en el lado frontal de las coxas an-

teriores; fémures y tibias negras, tarsos café; cubierta de las patas de finos pe-

los blancos, la mayoría de tamaño mediano, erectos; fémures posteriores con

2 cerdas rojizas en los lados exteriores; cerdas de las tibias anteriores y media-

nas, en su mayoría rojizas, en las tibias posterlores la mayoría negras. Abdo-

men cubierto de micropubescencia plateada, con una área oscura en la mitad

posterior del costado dorsal de los tergites y uma banda negra cerca de los

hordes laterales; cubierta formada por finos pelos blancos erectos; 3 cerdas fi-

nas y negras en los costados del primer tergite. Genitalia (Figs. 98, 99) café,

con peos blancos, más largos en los epandria; funda del pene según Figs.

y 96,

HEMBRA. Semejante al macho; vestidura: del mesonotum y abdomen

msá corta y más rala; ovipositor negro brillante con espinas negras.

Esta especie es dedicada al Dr. Ralph H. Davidson, del Departamento de

Zoología y Entomología de la Ohio State University.

MEDIDAS. Largo total 11.1 - 13.5 mm, promedio 12.9 mm (typo 12.9 mm);

largo de ala 7.5-9.1 mm, promedio 8.9 mm (typo 9.1 mm); ancho de ala

2.2-2.8 mm, promedio 2.6 mm (typo 2.8 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 183,159 y 1 (gen. miss.). CONCEPCION:

1 19 Beilavista, Concepción, 4 Abril, 1961, Artigas (INCO); Ig 12

(cópula) Concepción, Abril, 1961, Orellana (INCO); 192 Concepción, Mar.

9, 1962, Mendez (INCO); 192 Concepción, 1904, P. Herbst (CAS); 1 (gen.

miss.) Chiguayante, Abril 22, 1956, R. M. V. (INCO); 13 (gen. prep.) 12

(gen. prep.) Lota - Coelemu, Abril 9, 1961, Orellana (INCO); 19 San Pedro,

Ene. 29, 1957, J. R. (INCO). CURICO: 19 Cubillos, Cord. Curicó, Oct.

22-27, 1959, Peña (INCO). LINARES: 19 Fdo. Malcho, Cord. Parral, Ene.

1927, Peña (INCO). MAULE: 4G (typo) Cauquenes, Abril 22, 1900, Schone-

mann S. (1 INCO; 3 BERL); 19 Cauquenes, Mar. 27, 1900, Schonemann

S. (INCO); 12 Cauquenes, Mar. 22-27, 1898, Schonemann S. (BERL).

ÑUBLE: 39 (1 gen. prep.) 23 (1 gen. prep.) Bulnes, Abril 8, 1962, Mendez

(INCO); 3Z 32 Quilión, Abril 13, 1962, Mendez (INCO). O'HIGGINS:

1% Cord. Rengo, Schonemann S. (BERL). SANTIAGO: 19 Til - Til, Sept.

18, 1952, Oherens (INCO); 13 Melocoton, Santiago, Nov. 14, 1954, L. E.

Peña (BRAS). VALPARAISO: 192 Olmué, Abril 4, 1920, P. Herbst (CAS).

Sin localidad ni fecha: 33 Chile, E. P. Reed (1 USNM; 2 CAS).

— 131 —

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 420,

DISCUSION. Un gZ y una 9 de Concepción, colectados en cópula, fa-

cilitaron el reconocimiento de las hembras de esta especie; las hembras de

H. davidsont som practicamente impos bles de separar de las hembras de

H. digitatus cuando han sido colectadas aisladas de los machos. Los procesos

distales de los gonopodos son constantemente diferentes en estas dos especies,

de manera que permiten, basado en este carácter separar los machos sin ma-

yores dificultades.

Hypenetes digitatus n. sp.

(Figs. 100, 101, 103-105, 484)

TYPO. ¿G, de Lota - Coelemu, Abril 9, 1961, Orellana; este especimen está

depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chi:e.

DIAGNOSIS. “Tercer segmento antenal con la mitad basal negra, en forma

de pedúnculo, tercio distal en forma de clava; tibias negras; abdomen gris

en los costados, en el dorso negro brillante; gonopodos con un largo proceso

digitiforme en la parte distal.

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara y frente

con micropubescencia gris, más densa en la cara; pelos frontales largos, ne-

gros; cerdas ocelares largas y negras. Cabeza en vista lateral (Fig. 101): gíba

facial negra; mystax largo, totalmente negro; primero y segundo segmentos

antenales negros, con pelos blancos en los primeros segmentos y pelos negros

en los segundos segmentos; tercer segmento antenal con la mitad basal negra

y en forma de pedúnculo, la mitad distal es rojiza y en forma de clava; mi-

crosegmentos negros; barba blanca; pelos en la parte ventral de la proboscis,

finos largos y blancos, pelos cortos amarillos en el ápice; palpos maxilares

negros con pelos finos blancos; área postocular negra, con pelos largos y ne-

eros en la parte super'or detrás del vertex y pelos cortos, finos y blancos en

la parte inferior. Protorax con micropubescencia gris dispersa, cubierta de pe-

los finos, blancos, más densos en los lóbulos protoráccicos. Pleura toráccicas

negras con débiles reflejos púrpura, desuniformemente cubierta por micropu-

bescencia dorada oscura; vestidura formada por unos pocos pe/os largos; cer-

das mesepimerales negras. Mesonotum con micropubescencia, excepto en las

líneas centrales y en las manchas laterales, de color dorado pálido en los ca-

llos humerales, dorado oscuro en el centro y gris en los callos posteriores,

área posterocentral y scutellum; las líneas y manchas lucen café oscuro; la

vestidura del mesonotum y del scutellum, negras, con unos pocos pelos finos,

cortos y blancos entremezclados sobre los callos humerales; 10-14 cerdas dorso-

centrales negras pocos notorias; 2-3 cerdas notopleurales negras; 3-4 éerdas

intraalares negras; 5-8 cerdas postalares negras; 5-6 pares de cerdas scutela-

res negras. Costados del postmesonotum con micropubescencia plateada. Alas

hyalinas, con un halo café en la bifurcación de R y de R en r-m y en

s 4+5

la base de M,; venas café oscuras. Coxas semejantes en color y cobertura a

las pleuras toráccicas, pelos finos, blancos, más abundantes en la parte fron-

tal de las coxas anteriores; fémures negros, y tarsos cafés; cubierta de las pa-

tas de finos pelos blancos, en su mayoría erectos; fémures posteriores con 2

cerdas en el costado exterior; cerdas de las tibias, negras y rojas entremezcla-

das, en las tibias posteriores y en los tarsos la mayoría negras. Abdomen con

micropubescencia gris, tergítes 2-4 negro azulados en el dorso; tergites 5-6

con micropubescencia café oscura en el dorso, más destacada desde una vista

lateral; cobertura de cortos pelos negros en el dorso y pelos más largos y

blancos en los costados y en el vientre; 4 débiles cerdas negras en los costa-

dos del primer tergite. Genitalia (Figs. 103, 104) en su mayor parte rojiza;

vestidura pilosa mayormente megra, con pelos blancos entremezciados en los

epandria; gonopodos con un notable proceso d'stal digitiforme; funda del pe-

ne como en las Figs. 100 y 105.

HEMBRA. Similar al macho; ovipositor trunco, rojo oscuro y negro, es-

pinas negras.

El nombre digitatus corresponde a la existencia de un proceso digitiforme

en los gonopodos.

MEDIDAS. Largo total 9.5 - 13.5 mm, promedio 12.5 mm (typo 13.5 mm);

largo de ala 6.8-8.4 mm, promedio 7.6 mm (typo 8.4 mm); ancho de ala

11.8-2.4 mm, promedio 2.1 mm (typo 2.4 mm).

. MATERIAL EXAMINADO. 18% y 159. ARAUCO 1% Contulmo, Mar.

23, 1905, Schonemann S. (INCO); 1g 19 Contulmo, Mar. 20, 1902, Scho-

nemann S. (19 INCO; 17 Berl); 17 Contulmo, Abril 10, 1902, Schonemann

S (INCO); 13 Contulmo, Agos. 12, 1903, Schonemann (BERL); 1% Contul-

mo, Abril 28, 1903, Schonemann S. (BERL); 23 Contulmo, Mar. 27, 1903,

Schonemann S. (BERL); 1 12 Contulmo, Abril 5, 1902, Schonemann S.

(BERL); 19 Contulmo, Abril 25, 1903, Schonemann S. (BERL); 12 Contul-

mo, Feb., 1903, Schonemann S. (BERL); 1 Contulmo, Abril 19, 1902, Scho-

nemann S. (BERL); 137 Tres Pinos, Nahuelbuta, Feb. 16, 1965, O. Fetis

(INCO). CAUTIN 19 Temuco, Mar. 8, 1965, O. Fetis (INCO). CONCEP-

CION: 13 Coelemu, Mayo 1, 1956, L. Longeri (INCO); 1% (typo)Lota -

CION: 13% Coelemu, Mayo 1, 1956, L. Longeri (INCO); 13 (typo) Lota -

Coelemu, Abril 9, 1961, Orellana (INCO). MALLECO: 17 19 Angol, Feb. 9,

1941, P. A. Berry (3 INCO; $ USNM); 3gZ 39 (1 gen. prep.) Angol, Mar.

— 133 —

20-25, 1957, Parada (INCO); 12 Angol, 1200 m., Mar. 10, 1929 (INCO); 12

Angol, Mar. 6, 1941, P. A. Berry (INCO); 12 Angol, Abril 10, 1927 (USNM);

13 Angol, 1200 m., Mar. 10, 1929 (USNM). SANTIAGO: 1% 12 Maipú,

Santiago, Abril 13, 1959, Peña (INCO). VALPARAISO: 17 A¡hué, Sne., 1823

(INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 484.

DISCUSION. Las hembras de esta especie son difíciles de separar de las

hembras de H. davidson:; las hembras de H. digitatus corrientemente presen-

tan el ovipositor más truncado que las hembras de H. davidsont.

He estudiado 2 ejemplares del Naturhistorisches Museum, Wien: 19 Con-

cepción, Chile, 3- 1908 y 1 Concepción, 24 II, 1907; la hembra está etique-

tada como typo y el macho como cotypo de Hypenetes princeps Hermann.

Existe aparentemente un error en la etiquetación, porque Hermann no des-

crib'ó ninguna especie princeps de Chile. Macquart, 1847 (2) : 19, describió

Dasypogon princeps de “Nouvelle - Hollande” y Brazil, no de Chile, por lo

tanto, estos dos ejemp!ares no corresponden al material original de Macquart;

eilos son Hypenetes digitatus n. sp.

Hypenetes fucosus n. sp.

(Figs. 102, 106, 107, 109, 468)

TYPO. ¿G, de Pichinahuel, Cord. Nahuelbuta, 1100-1400 m., Arauco,

Ene. 31, 1954, L. Peña; este ejemplar está depositado en el Departamento

de Zoología, Universidad de Concepción, Chi:e.

DIAGNOSIS. Antena negra, tercio basal del tercer segmento antenal pe-

duncul forme; abdomen negro azulado brillante, con una marca triangular en

los costados de cada tergite, y se continúa como una línea a lo largo de los

bordes posteriores; genitalia de los macho café rojiza.

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara y frente

con micropubescencia pateada, abundante micropubescencia dorada oscura en

el área central de la frente y sobre el ocellarium; pelos frontales y cerdas

ocelares negras. Cabeza en vista lateral: giba facial en su mayor parte negra,

plateada en el lado dorsal; mystax negro; antenas negras, tercer segmento

antenal con el tercio basal en forma de pedúnculo; primero y segundos seg:

mentos con pelos negros; barba blanca; pelos del lado ventral de la proboscis

y de los palpos maxilares, blancos; área postocular con micropubescencia do-

rada dispersa en el centro, plateada en los bordes; vestidura del área postocu-

lar de pelos de tamaño mediano y negros, ubicados cerca del vertex, más

cortos cerca del centro y más finos y blancos en la parte basal. Protorax con

— 134 —

micropubescencia plateada, pelos blancos, más abundantes en los lóbulos. pro-

toráccicos. Pleura toráccica con grandes áreas de m'cropubescencia, en su ma-

yoría plateada sobre la sternopleura, dorada oscura sobre los otros sclerites,

unos pocos pelos blancos finos, repartidos dispersos sobre el área; cerdas me-

sep"merales negras. Mesonotum café oscuro, con densa micropubescencia dora-

da en los bordes de las líneas centrales y de las manchas laterales, ligeramente

plateada sobre los callos humerales y cerca de los callos posteriores; scutellum

café oscuro, con una pequeña área de micropubescencia plateada en cada

costado; vestidura del mesonotum y del scutellum, negra; 7 notables cerdas

dorsocentrales negras; 3 cerdas notoplurales negras; 3 cerdas intraalares negras;

3 cerdas postalares negras; 3 pares de cerdas scutelares megras. Coxas negras

brillantes, desuniformemente cubiertas con m'cropubescencia plateada, pelos

blancos, más abundantes en la parte frontal de las coxas anteriores; fémures

negros; tibias y tarsos café más claros en la base de las tibias; vestidura de

las patas, de pelos negros; fémures posterlores con 4 cortas cerdas negras en

el costado exterior y 1 cerda corta y negra en el lado ventral cerca del ápice;

cerdas de las tibias y tarsos negras. Costados del postmesonotum con micropu-

bescencia plateada. Alas hyalinas, café alrededor de las bifurcaciones de las

venas longitudinales y de las venas transversas, excepto en la bifurcación de

R,-R.. Abdomen negro azulado, brillante, con claras marcas blancas trian-

gulares en los costados de los tergites, las cuales se continúan como una línea

a lo largo dei borde posterior; en la línea mediodorsal del abdomen presenta

micropubescencia café poco destacada; cubierta pilosa, de pelos cortos negros,

de aspecto uniforme. Gen'talia (Figs. 102, 106) café rojiza, cubierta de pelos

negros dispersos; funda del pene como en las Figs. 107, 109).

HEMBRA. Semejante al macho; lado dorsal de los tergites 5-8 rojizos,

con micropubescencia café poco destacada; espinas del ovipositor negras.

El nombre fucosus hace referencia al vistoso color del abdomen y de la

genitalia en ambos sexos.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 11.5 mm; largo de ala 7.5 mm;

ancho de ala 2.4 mm. Paratypos de tamaños semejantes.

MATERIAL EXAMINADO. 43 y 29%. ARAUCO: 1¿Z (typo) Buta-

malal, Cord. Nahuelbuta, 1100 - 1400 m., Arauco, Ene, 23-31, 1954, L. Peña

(INCO); 3% (1 gen. prep.) Pichinahuel, Cord. Nahuelbuta, 1100 - 1400 M,,

'Arauco, Ene; 31, 1954, L. E. Peña.(1 5 OTI; 24.198 INGO).. NUBLE:

19 Las Cabras, Cord. Chilián, 1500 m., Ene. 6-31, 1963, L. E. Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 468.

DISCUSION. Esta especie es claramente distinguible por el vivo color. de

su abdomen; HH. critesi tiene marcas similares en el abdomen, .pero- los. re-

— 135 —

flejos azulados son mucho menos intensos, las hembras no tienen rojizo el cos-

tado dorsal de los tergites 5-8. El carácter definitivo para separar las dos

especies es la genitalia de los machos; la funda del pene es en H. fucosus com-

pietamente diferente de todas las otras especies estudiadas.

Hypenetes magellanicus n. sp.

(Figs. 108, 110-112, 418)

TYPO. ¿£, Cerro Guido, Magallanes, Feb. 11, 1957, Cekalovic; este espe-

cimen está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Con-

cepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo y patas negras, con micropubescencia gris dispersa

en el toráx y en el abdomen; antenas negras, mitad basal del tercer segmen-

to en forma de pedicelo; hypandrium con 2 espinas largas, curvadas en el

ápice.

DESCRIPCION DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal: cara y frente

con micropubescencia gris dispersa; pelos frontales negros, con unos pocos pe-

los blancos, más finos, y de igual largo uniformemente entremezclados; cerdas

ocelares largas, negras. Cabeza en vista lateral: giba facial oscura, con micro-

pubescencia gris dispersa; mystax negro; antenas negras; pelos en el primero

y segundo segmento antenal blancos; barba blanca; pelos en la parte ventral

de la proboscis y en los palpos maxilares blancos; área postocular semejante

en covertura a la frente y el vertex, pelos negros en la parte superior y bian-

cos en la parte inferior. Protórax con pelo blanco. Pieuras toráccicas negras,

con micropubescencia gris, dispersa, a lo largo de los bordes de las líneas cen-

trales y de las manchas laterales; vestidura negra, unos pocos pelos blancos

entremezclados sobre los callos humerales; scutellum de vestidura semejante

al mesonotum, pelos finos, negros; 6-7 cerdas dorsocentrales negras; 2 cerdas

notopleurales negras; 2 cerdas intraalares negras; 4 cerdas postalares negras;

3-4 pares de cerdas scutelares. Costados del postmesonotum con micropubes-

cencia gris. Alas hyalinas, totalmente transparentes, venas café. Coxas semejan-

tes en vestidura a las pleuras toráccicas, pelos blancos, más abundantes en el

costado frontal de las coxas anteriores; fémures, tibias y tarsos negros, con

finos pelos blancos; cerdas de las patas café, más oscuras en los tarsos; fému-

res posteriores con 3 cortas cerdas en el costado exterior, 2 cerca del ápice,

l cerca de la base, y 2 cerdas en la mitad apical sobre el lado ventral. Abdo-

men uniformemente cubierto de micropubescencia gris dispersa; vestidura de

finos pelos blancos, más largos en los costados de los tergites 1-3 y en los

sternites. Genitalia (Figs. 108, 110) café oscura, pelos en su mayor parte

blancos, con unos pocos pelos negros intercalados; hypandrium con 2 espinas

— 136 —

largas y curvas, de color negro, en el ápice; funda del pene según Figs.

111 y 112.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor negro, espinas negras.

El nombre magellanicus se refiere a la localidad del typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 9.8 mm; largo alar 6.8 mm; ancho

de ala 2.1 mm. Paratypos semejantes en tamaño.

MATERIAL EXAMINADO. 4S y 29%. MAGALLANES: 4G (1 typo),

(1 y 12 gen. prep.) Cerro Guido, Magallanes, Feb. 11, 1957, Cekalovic

(INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 418.

DISCUSION. Las largas espinas en el ápice del hypandrium son el ca-

rácter más notable para distinguir esta especie. La serie de especímenes estu-

diados está un poco engrasada, por lo que la coloración de la micropubescen-

cia no fué adecuadamente observada.

Hypenetes punctipennis (Philippi)

(ies LE UU El

Clavator punctipennis Philippi, 1865 p. 699, Pl. 26, figs. 31 y 3lá-b, San

Fernando; Schiner, 1868, p. 159, Chile.

Hypenetes punctipennis (Philippi) Bromley, 1932,p. 264; Stuardo, 1946, p.

80; Bull, 1962, p. 154.

TYPO. Perdido. Un neotypo es aquí designado como un ¿ de Pichina-

huel, Arauco, 1100 m. Marzo 26-28, 1954, L. Peña; Este especimen está de-

positado en el Departamento de Zoología de la Universidad de Concepción,

Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro con abundantes áreas de micropubescencia

plateada; antenas negras, mitad basal del tercer segmento antenal pedicelado;

tibias negras; 8 - 10 gruesas cerdas negras, de largo mediano, en la mitad api-

cal del costado ventral de los fémures posteriores.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO. (G'). Cabeza en vista frontal cara y

frente con abundante micropubescencia plateada; pelos frontales y cerdas oce-

lares largas, negras. Cabeza en vista lateral giba facial negra y plateada;

mystax largo, abundante y negro; antenas negras, primer ysegundo segmen-

tos antenales con pelos blancos, unos pocos pelos negros en el ápice del se-

gundo segmento; tercer segmento antenal en forma de pedúnculo en la mitad

basal; barba, pelos del costado ventral de la proboscis y de los palpos maxi-

— 137 —

lares, finos y blancos; área postocular con micropubescencia plateada, vestidu-

ra negra, pelos en el área occiptal largo. Protórax com micropubescencia

gris y unos pocos peios blancos dispersos. Pleura toráccica con reflejos violá-

ceos claros, micropubescencia en su mayoría dorada oscura o gris oscura, con

algunos pocos pelos blancos finos; cerdas mesepimerales negras. Mesonotum

con micropubescencia dorada, densa, a lo largo de los bordes de las líneas

centrales y de las manchas laterales, la micropubescencia es gris oscura en los

calios humerales y posteriores y en el scutellum; líneas centrales, manchas la-

terales y área posterocentral café oscuras; vestidura negra, con unos pocos pe-

los finos y blancos entremezclados en los callos humerales; scutellum con

pelos negros £nos de tamaño mediano; 10-14 cerdas dorsocentrales, finas, ne-

gras y poco notorias; 2 cerdas notopleurales negras; 2 cerdas intraalares negras;

8 - 10 cerdas postalares negras; 4-5 pares de cerdas scutelares. Coxas de cober-

tura similar a las pleuras toráccicas, pelos blancos, más abundantes en el la-

do anterior de las coxas frontales; fémures, tibias y tarsos negros, pelos blan-

cos y negros entremezclados, en su mayoría negros en los fémures posteriores,

principalmente biancos sobre los fémures anteriores y medios; pelos más cor-

tos en las tibias posteriores; fémures posteriores con un grupo de 10 cerdas

negras de tamaño mediano sobre la m'tad apical del lado ventral; en las pa-

tas cerdas blancas y rojizas entremezcladas, todas en las tibias poste-

riores. Costados del postsenomoto con micropubescencia plateada. Alas

hyalinas, con un área café alrededor de las bifurcaciones de las venas

longitudinales y sobre las venas transversas (excepto sobre la div'sión de

R,-R.); venas negras. Abdomen negro brillante con micropubescencia gris

en los costados, en el borde posterior de los tergites y en los esternites; mi-

cropubescencia mas abundante en los últimos 3 tergites; vestidura de pelos -

cortos y negros en el lado dorsal y de pelos blancos, de tamaño mediano y

más finos sobre los lados laterales y ventral. Genitalia (Figs. 113, 114) rojizo

oscura, pelos princ'pa-mente negros y con unos pocos pelos blancos y más

finos entremezclados; 2 espinas cortas y negras en el extremo del hypandium;

funda del pene como en las Figs. 116, 117.

HEMBRA Similar al macho; ovopositor negro, levemente aguzado, espi-

nas negras.

MEDIDAS Largo total 9.5-11.5 mm, promedio 10.6 mm (neotypo 10.8

mm); largo de ala 7.1-8.6 mm, promedio 7.7 mm (neotypo 7.5 mm); ancho

de ala 2.1-2.3 mm, promedio 2.2 mm (neotypo 2.1 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 13,7 2 y 3 (gen. miss.) ARAUCO: 3

(gen miss), 6 Z (1 neotypo) (2 gen prep.), 4 2 (2 gen. prep.) Pichinahuel,

Arauco, 1100. m, Marzo 26-28, 1954, 1. E. Peña (3 gen. perd.) 3,22

BRAS; 3Z, 22 .-i¡NCO). BIO-BIO: 1 Los Angeles, Enero, 12, 1954, Jara

- — 138 —

(INCO). LINARES: 1 Z (gen. prep.) Fdo. Malcho, Cord. Parral, Enero,

1957, Peña (INCO). MALLECO: 1¿g¿ Lonquimay, Febrero 6-21, 1962, Peña

(INCO). ÑUBLE: 1 Las Trancas, Cord. Ñuble, Marzo, 9-12, 1952, L. E.

Peña (INCO). SANTIAGO: 37,329 (l gen. prep.) Farellones, Abril 8, 1962,

L. E. Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA: Ilustrada en Fig. 417.

DISCUSION: La presencia de 8-10 cerdas negras en el lado ventral de

los fémures posteriores es un carácter distintivo de esta especie.

Hypenetes schineri n. sp.

(Figs. 118-123, 125, 493)

Hypenetes fulvicornis (Macquart), Schiner, 1868, p. 159.

TYPO. G, Rancagua, Mittel Chile, Abril 1897, Schonemann $.; este espe-

cimen está depositado en el Departamento de Zoo'ogía, Universidad de Con-

cepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo con grandes áreas de micropubescencia dorada,

apareciendo de color café, claro; tercer segmento antenal rojizo, la mitad ba-

sal en forma de pedúnculo; mystax negro, con unos pocos pocos pelos blan-

cos en la parte basal; tibias café claro o fojízas.

DESCRIPCICN DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal: cara con den-

sa micropubescencia plateada; frente con micropubescencia dorada esparcida;

pelos frontales finos, de tamaño mediano, blancos, entremezclados con 4 pe-

los setiformes a cada lado; cerdas oceiares largas y negras. Cabeza en vista

lateral: giba facial gris oscura; mystax largo, negro, con unos pocos pelos

blancos en la parte basal; primero y segundo segmentos antenales con pelos

blancos, con unos pocos pelos negros largos en el ápice del segundo segmento,

con la mitad basal en forma de pedúnculo; microsegmento negro; barba,

pelos en el lado ventral de la proboscis y en los palpos maxilares, blancos;

área postocular con m'icropubescencia dorada y plateada; vestidura principal-

mente blanca, con un grupo de pelos negros entremezclados en cada lado del

vértex. Protórax con micropubescencia dorado oscura y finos pelos blancos,

más abundantes en el lóbulo toráccico. Pleuras toráccicas negro brillantes,

desigualmente cubiertas con grandes áreas de micropubescencia dorado - oscura

y con unos pocos pelos blancos finos, cerdas mesepimerales blancas y negras

entremezcladas. Mesonotum y scutellum cubiertos por micropubescencia densa

y dorada, café oscura en las bandas centrales y en las manchas laterales, y

plateada en los callos posteriores y en la sutura tranversa; vestidura negra,

na y blanca en los callos humeraies; 10-11 cerdas dorsocentrales; 4 cerdas

— 139—

notopleurales; 2 cerdas intraalares negras; 7-8 cerdas postalares negras; 5

pares de cerdas scutelares negras. Costados del mesonotum con micropubes-

cencia dorada. Alas hyalinas (Fig. 118), levemente café con un área café al-

rededor de la bifurcación de las venas longitudinales y sobre las tranvsersas.

Coxas similares en cobertura a las pleuras toráccicas, pelos blancos, más

abundantes en el lado anterior de las coxas frontales; fémures negros con

largos pelos blancos; fémures posteriores con 2 cerdas rojizas y una negra en

el lado externo; tibias y tarsos café rojizos con cortos peios blancos, cerdas

roj'zas y negras entremezcladas, negras en las tibias y tarsos posteriores.

Abdomen principalmente negro en el dorso, con un área triangular dorada

en la parte anteroventral de cada tergite y con micropubescencia plateada en

los costados, dejando una larga banda más oscura paralela a los bordes late-

rales; áreas doradas más grandes en los tergites 5-7; vestidura de pelos cortos,

negros en el dorso, blancos en los lados laterales y ventral. Genitalia (Figs.

120 - 121) café rojiza; gonópodos negros; vestidura principalmente de pelos

blancos entremezclados con unos pocos pelos negros; hypandrium con 3 espi-

nas negras en el extremo; funda del pene como en las figs. 119 y 122.

HEMBRA: Similar al macho; ovopositor negro con cortos pelos blancos;

espinas negras (Figs. 123 - 125).

Se dedica esta especie a Ignaz R. Schiner, quien dio una descripción de

ella en 1868 (ver discusión).

MEDIDAS. Largo total 13.5-16.5 mm, promedio 15.3 mm (typo 15.5

mm); largo de ala 9.6- 11.1 mm, promedio 10.2 mm (typo 10.6 mm); ancho

ala 2.7 - 3.2 mm, promedio 3.0 mm (typo 3.1 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 163 y 1092. O'HIGGINS: 13 Cord. Rengo,

Schonemann S. (BERL); 23% (typo) Rancagua, Abril, 1897, Schonemann

(INCO, BERL). VALPARAISO: 7% 29 Laguniilas, Abril, 1942, S. Ramón,

EP. Reed (5% 2096485723. INCO); Lg" ¡Olmué, Marzo +21. 920098:

Herbst (INCO); 1 Olmué, Marzo 23, 1920, P. Herbst (INCO); 1g Valpa:

raíso, E. P. Reed (CAS); 392 (1 gen. prep.) 1 y 2 (cópula) Lagunillas,

Abril, 12, 1942, E. P. Reed (29.,€AS; 29 13 INGO). Localidad mncrenta:

US 219, 1 (gen. prep.) Ghile, E. P. Reed (17 19 CAS; 19 1 (gen prepa

(INCO); Chile, E. Reed (INCO).

DISCUSION. Las espinas en el ápice del hypandrium varían en número

desde 2 a 4; en algunos especimenes, las tibias posteriores son café oscuras;

los especimenes engrasados lucen más oscuros que los limpios, algunos lucen

casi negros.

Macquart aparentemente describió dos especies diferentes bajo el nombre

Dasypogon fulvicornis, (1) especimenes de Brasil (1846:67, Pl. 7, fig. 1), y

(2) especimenes de Coquimbo, Chile (1850:68, Pl. 6, fig. 12); las dos espe-

— 140 —

cies se diferencian en varios caracteres según las descripciones. La especie de

1816: tórax gris; 3 largas bandas negras en el tórax (lo que no concuerda

con la fig. 1 en Pl. 7); mystax negro, mezclado con pelos blancos, fémures

negros; primer y segundo segmentos antenalés negros con pelos blancos; ter-

cer segmento anienal atenuado en la base. La especie de 1850: Tórax café,

con manchas escapulares, 2 líneas café amarillentas y una banda sobre la in-

serción de las alas; mystax reducido, b:anco; fémures rojizos; primer segmento

antenal con pelos negros, segundo segmento con pelos rojizos; tercer segmento

antenal agrandado en la base; la figura de Macquart 1850, fig. 12, muestra

el mystax reducido, la cara plana y la forma de las antenas.

Schiner (1863:159) describe lo que el pensó era Dasypogon fulvicornis

Macquart 1846 y lo cambió al género Hypenetes, pero en realidad lo que él

descr:bió no fue fulvicornis Macquart 1846. D. fuluicornis Macquart 1846, es

probablemente una especie válida del Brasil, y probablemente también, perte-

nece al género Hypenetes, pero la especie de Schiner es diferente y es la qué

aquí se describe como Hypenetes schineri n. sp. Schiner (op. cit.) ubicó

D. fulvicornis Macquart 1850 en el género Scylaticus; en este trabajo se ha

ubicado en el género Oberon. Blanchard (1852:366) describió un Y y una 2

de D. fulvicornis Macquart de Coquimbo (Chile); su descripción concuerda

con la descripción de Macquart 1850, lo que podría confirmar la localidad

del material de Macquart 1850. El material original de Macquart para sus

dos especies homónimas no ha s'do encontrado.

Un ¿G de H. schineri de Valparaíso, R. Novara, en el Naturhistorisches

Museum, Wien, está identificado como Hypenetes fulvicornis por Hermann,

y etiquetado como typo de flavicorn:s; flavicornis es un nomen nudum.

Hypenetes valentinel n. sp.

(Bes i2 A 265 127129419)

TYPO. ¿Z, de Coquimbo, Nov. 7-10, 1961, Peña; este espécimen está

depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chiie.

DIAGNOSIS. Cuerpo con abundante micropubescencia gris; tercer seg-

mentos antenal negro, tercio basal pediceliforme; tibias negras; fémures poste-

riores con 2 cerdas en el lado externo, una cerca de la base y la otra cerca

del ápice; ápice del hypandrium espatulado, con una muesca en el borde

distal.

DESCRIPCION DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal: cara cubierta

con micropubescencia gris clara, frente con micropubescencia grs oscura; pe-

los frontales y cerdas ocelares largas, negras. Cabeza en vista lateral: giba fa-

cial negra; mystax negro; tercer segmento antenal negro, tercio basal pedice-

— 141 —

liforme, primer y segundo segmentos en su mayor parte con pelos negros, al-

gunos pelos blancos más finos están entremezclados; barba, pesos en la parte

ventral de la proboscis y en los palpos maxilares, blancos; área postocular

con micropubescencia gris oscura, vestidura negra en la mitad superior, blan-

ca en la mitad basal. Protórax con micropubescencia gris y finos pelos blan-

cos, más densos en los lóbulos protoráccicos. Pleuras toráccicas uniformemente

cubiertas con micropubescencia gris, algunos pelos largos en las sternopleuras;

cerdas mesepimerales negras. Mesonotum y scutellum con densa micropubes-

cencia gris, excepto en las líneas centraies, en las manchas laterales y en una

línea detrás de los cailos humerales; vestidura negra; 10-14: cerdas dorsocen-

trales negras de tamaño moderado, débiles y poco destacadas; 2-3 cerdas no-

topleurales negras; 1 - 2 cerdas intraalares; 7-9 cerdas postalares negras; 6 pa-

res de cerdas scutelares largas y largas y finas. Costados del postmesonotum con

micropubescencia gris. Alas hyalinas, venas café oscuras. Coxas con vestidura

semejante a las pleuras toráccicas, pelos blancos, más densos en el lado frontal

de las coxas anteriores; fémures, tibias y tarsos negros; vestidura de los fému-

res anterlores y medianos en su mayoría blanca, en los fémures posteriores

ápice y otra cerca de la base; cerdas en las tibias frontales y medianas, negras

negro brillante en el dorso; costados y bordes posteriores de los tergites con

densa micropubescencia; áreas de micropubescencia gris dispersa en la línea

mediadorsal, más acentuada cerca del borde anterior de cada tergite; vestidura

de abundantes pelos erectos, negros en el dorso y blancos en los costados y

vientre, más largos en los segmentos 1-3; en los costados del primer tergite

hay 6-7 cerdas negras. Genitalia (Figs. 127 y 129) rojiza; vestidura negra

con unos pocos pelos blancos entremezclados hypandrium espatulado en el

extremo distal, con una muesca en el borde distal, doblado en un ángulo de

900, el ápice corrientemente oculto entre los epandria y los cercos; funda del

pene como en las Figs. 124 y 126.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor negro brillante, con espinas

negras.

Esta especie es dedicada al Dr. Barry D. Valentine del Departamento de

Zoología y Entomología, “The Ohio State University.

MEDIDAS. Largo total 10.6-14.3 mm, promed'o 11.7 mm (typo 11.8

mm); largo de ala 7.6-9.4 mm, promedio 8.0 mm (typo 8.1 mm); ancho de

ala 2.2 -2.8 mm, promedio 2.5 mm (typo 2.4 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 16% 69. ACONCAGUA: 1Z 19 Rio

Blanco, Aconcagua, Dic. 5-8, 1961, Peña (INCO); 6gZ(l gen. prep.) 29

Valle Los Piuquenes, Aconcagua, Feb. 7 - 12, 1964, Peña (27 INCO; 47 22

OTT). COQUIMBO: 15. Caren, Dic. 1%, 1963L.. Es Bena(UNCO) AS

1 9 estero Canela, Puerto Oscuro, Coquimbo, Oct. 24, 1961, Peña INCO); 1GZ

(typo) 19 (gen. prep.) Coquimbo, Nov. 7 - 11, Peña (INCO); 1 19 5 mi. N.

— 142 —

of Illapel, Nov. 30-5 [?] R. £ M. (CAS); 1% NO 28695 Hda. Illapel, Coquim-

bo, 900 - 1000 m., Oct. 20-30, 1954, L. E. Peña (BRAS); 1gG *Paichnamo,

Elqui, Nov., Dr. Gajardo (PAR). CONCEPCION: 1G Concepción, 1904, P.

Herbst (MUNCH). ÑUBLE: 19 (gen. prep.) 40 km. E. of San Carlos, Dic.

23, 1950 (INCO). O'HIGGINS: 137 Pangal, O'Higg:ns, Ene, 3 1964, Monte-

ro (CEE). Sin localidad ni fecha: 13 (JIM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 419.

DISCUSION. El color de la genitalia de los machos varía del rojizo al

Negro.

Un ¿Z de Cordillera Rancagua, Chile, 12, 1903, P. Herbst, etiquetado

como typo de Hypenetes rubrisetosus Hermann en ei Naturhistorisches Mu-

seum, Wien, es Hypenetes valentinei n. sp., Hypenetes rubrisetosus es un

nomen nudum. Un ¿ de la colección J. TT. Medina leva una etiqueta ma-

nuscrita de Philippi en la que se lee: “Clavator ? hirsutus Ph”, este es un

nomen nudum.

ELERTFOCHELINA 1: gen.

TYPO DEL GENERO: Leptochelina jaujensis n. sp.

Cabeza en vista frontal un -sexto más alta que ancha; vertex moderada-

mente hundido; ocelo mediano en la base del ocelario. Cabeza en vista late-

ral: área postocular dos - tercios el ancho del ojo; giba facial bien desarrolla-

da, ocupando cuatro - quintos de la cara; mystax abundante, ocupando toda el

área frontal de la giba facial; primer segmento antenal cilíndrico, dos veces

el largo del segundo, el cual es semiesférico, tercer segmento largo, una y

media vez el largo de los dos primeros segmentos combinados, ligeramente pe-

dicelado y con ua corto microsegmento el cual lleva una diminuta espina en

el ápice. Collar con una línea completa de cerdas gruesas agudas. Mesonotum

con líneas centrales y manchas laterales; covertura del mesonotum de pelos

cortos y dispersos, cerdas gruesas y largas; 5 cerdas dorsocentrales largas y

gruesas; 4 cerdas notopleurales largas; 5 largas cerdas intraalares; 4 cerdas pos-

talares largas; 3 pares de cerdas scutelares largas, scutellum con un mechón

de pelos en cada costado. Costados del postmesonotum con micropubescencia,

sin pelo. Celda marginal abierta; cuarta celda posterior cerrada y pedicelada;

R, alcanza el borde del ala antes del ápice del ala, R, lo alcanza después

o detrás del ápice; celda anal cerrada, con un corto pedicelo; M, y m for-

man un ángulo de 500. Espina de la tibia frontal ausente. Abdomen trunca-

— 143 —

do, primer segmento tan ancho como el mesonotum, con una líneas de cerca

de 16 cerdas gruesas en cada costado, entre las dos líneas queda un espacio

libre que corresponde a la línea dorsal. Las alas no alcanzan el extremo del

abdomen o lo alcanzan sin sobrepasarlo. Patas con abundantes cerdas largas;

uñas largas, ligeramente curvadas, pulvilo diminuto, un - quinto del largo to-

tal de la uña. Genitalia del macho pequeña, no rotada; epandria ligeramente

elobosos en el extremo distal. Ovipositor con el noveno tergite ligeramente

aplastado en el lado dorsal; 5 pares de espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 1 especie, Leptochelina jaujensis

Sp:

Este género está proximamente relacionado con Creolestes Hull y con

Bathypogon Loew, de quienes puede ser separado por las uñas característica-

mente largas, delgadas y muy poco curvadas, además por el diminuto pulvilo

que es apenas de un - quinto del largo de la uña; en Creolestes y Bathypogón,

las uñas son fuertemente curvadas y los pulvidos casi alcanzan el extremo dis-

tal de la uña. Leptochelina tiene uma línea de cerca de 16 cerdas en cada

costado del borde posterior del primer tergite; estas cerdas están reducidad a

un pequeño grupo de no más de 8 en cada lado en Creolestes y Bathypogon,

y nunca forman una línea completa a lo largo del borde posterior. Por las

alas y las uñas, se parece a Dicranus Loew, pero en Dicranues los pulvilli

están ausente y el epondium muy reducido, además el mystax está limitado

a unas pocas líneas de pelos en el borde oral.

El nombre Leptochelina hace referencia a las uñas largas (1Aerros = largo;

Xpla. = uña).

Leptochelina jaujensis nm. sp.

(Figs. 128, 130-132, 426)

TYPO. 2, de Jauja, Mamiña, Iquique, Chile, Nov. 16, 1951, L. E. Peña;

este especimen está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad

de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo, cabeza y patas negras; cerdas de las patas largas y

café claro; cuerpo y patas cubiertos con pelos blancos mystax blanco con pe-

los negros a los costados; antenas negras; uñas largas, delgadas, aguzadas, l:ge-

ramente curvadas; pulvilos diminutos, amarillos; cerdas del collar largas y ne-

gras; cerdas notales largas y negras.

DESCRIPCION DEL TYPO (9). Cabeza en vista frontal cara negra

con micropubescencia blanca dispersa; frente del mismo color que la cara, con

pelos blancos dispersos entremezclados con unos pocos pelos negros; ocellarium

con igual color y cobertura que la frente; cerdas ocelares no destacadas, pelo

blanco; ocelos rojizos. Cabeza en vista lateral (Fig. 128) giba facial negra

— 144 —

brillante con micropubescencia blanca dispersa; mystax de pelos blancos en el

centro y café oscuros casi negros en los costados; antenas negras, primer y se-

gundo segmento antenal con cerdas y pelos negros cortos en la parte dorsal

y pelos y cerdas largas en la parte ventral, las cerdas más largas alcanzan

hasta la mitad del tercer segmento; tercer segmento largo, ligeramente dilata-

do cerca del centro, con un microsegmento cilíndrico que posee una diminu-

ta espina en el ápice (Fig. 132); barba blanca; cerdas occipitales negras, or-

denadas en una línea a lo largo del borde posterior de los ojos; vestidura

postocular reducida a unos pocos pelos blancos; proboscis negra brillante con

largos pelos blancos en la parte basoventral y pelos cortos blancos en el ápice;

palpos maxilares negros con pelos blancos.

Protórax negro con pelos largos blancos dispersos; cerdas del coliar lar-

gas, gruesas, negras y agudas, unos pocos pelos blancos entremezclados con las

cerdas. Pleura toráccica negra con micropubescencia dispersa e inconspicua,

plateada o dorada, unos pocos pelos blancos presentes sobre los esclerites;

cerdas mesepimerales blancas. Mesonotum, callos humerales y callos posterio-

res con micropubescencia gris oscura; líneas centrales y manchas laterales po-

co destacadas en el typo por estar algo engrasado, en buen estado posiblemen-

te ligeramente café como en algunos paratypos; mesonotum vestido de pelo

blanco disperso y cerdas negras largas; scutellum negro, con un grupo de pe-

los blancos en cada lado; 5 cerdas dorsocentrales largas y negras; 4 cerdas

notopleurales largas y negras, 3 en el borde posterior de la notopleura y una

cerca de los callos humerales; 5 cerdas intraalares largas negras, ordenadas en

una sola línea; 4 cerdas postalares largas y negras; 3 pares de cerdas scutelares

largas y negras. Costados del postmesonotum negros con micropubescencia

gris dispersa. Alas (Fig. 130) hyalinas, yenas café oscuras. Patas negras bri-

llantes cubiertas con pelos blancos dispersos y cerdas largas de color café cla-

ro; coxas anteriores con abundantes pelos cerdosos biancos. Uñas (Fig. 131)

largas, ligeramente curvadas y agudas, la mitad basal ligeramente rojiza, la

mitad distal negra; pulvilos diminutos, un - quinto del largo total de las uñas,

de color amarillo claro. Abdomen negro, cubiertos con pelos blancos disper-

sos, borde posterior de los tergites café, borde lateral de los 3 primeros ter-

gites rojizos; sternites negros, bordes posteriores rojizos; borde posterior del

primer tergite con una fila de 16 cerdas negras y gruesas en cada costado,

formando casi una fila completa a lo largo del borde posterior del tergite,

interrumpida por una corta distancia en la línea mediodorsal; ovipositor ne-

gro, los últimos 3 segmentos con pelos cortos blancos dispersos; 5 pares de

espinas negras en los acanthophorites.

MACHO. Semejante a la hembra; tergites abdominales con pelos negros

en el área central, blancos en el borde opsterior y bordes laterales, siendo los

pelos blancos más abundantes en los costados de los tergites 1-3. Genitalia

ilustrada en Fig. 131 b.

= 145 —

El nombre jaujensis se refiere a la localidad del typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 12.0 mm; largo del ala 7.5 mm.,

ancho del ala 2.1 mm. Paratypos de tamaño semejante.

MATERIAL EXAMINADO. 13 y 29. TARAPACA: 29 [Typo] Jauja,

Mamiña, 3500 m., Iquique, Nov. 15, 1951, L. E. Peña (INCO); 1gG Parca,

2000 m. Jul. 10, 1966, Herrera Col. (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 426.

DISCUSION. Esta especie puede ser fácilmente identificada por las largas

y debilmente curvadas uñas y los cortos pulvilos, las largas cerdas negras del

mesonotum y la casi completa fila de gruesas cerdas negras en el borde pos-

terlor del primer tergite abdominal.

OBELOPHORUS Schiner

Obelophorus Schiner, 1866, p. 672; Hull, 1962, p. 45.

TYPO DEL GENERO, Dasypogon terebratus Macquart 1849, por des'gnación

original.

Cabeza en vista frontal: ligeramente más alta que ancha; cabeza en vista

lateral: con el área postocular un - tercio del ancho del ojo, giba facial bien

desarrollada, ocupando cinco - sextos de la cara. Antenas largas, tercer seg-

mento antenai cerca de 3 veces el largo de los primeros dos segmentos, con

un microsegmento terminal que posee una pequeña espina en el ápice. Mystax.

abundante, los pelos en la parte superor más cortos que los de la parte in-

ferior. Mesonotuma cubierto de pelo corto; los pelos son más largos y densos

cerca de: borde posterior. Mesonotum negro brillante sin marcas visibles.

Scutellum con abundantes pezos largos; 10-13 pares de largas cerdas gruesas,

entremezcladas con pelos de igual longitud. Costados del postmesonotum cu-

biertos de densa micropubescencia, sin pelos. Celda marginal abierta; cuarta

celda posterior cerrada y pedicelada; R, alcanza el borde del ala antes del

ápice; R, alcanza el borde del ala detrás del ápice; celda anal cerrada y pe-

dicelada; M, y ra forman un ángulo de 1709, algunas yeces forman casi una

línea recta. Espina de las tibias frontales ausente. Abdomen grueso. Alas al-

canzan el extremo del abdomen. Genitalia masculina pequeña, no rotada;

hypandrium bien desarrollado, con dos procesos posterolaterales; epandrium

en forma de forceps, pequeño, sin hendiduras; gonopodos, fusionados en el

margen ventral; hypandrium rectangular. Genitalia de la hembra larga, ovi-

positor formado por los segmentos 7-9; séptimo cilíndrico, largo, expandido

= 146 =-

en el borde posterior; extremo del ovipositor con un grupo de gruesas cerdas

entremezcladas con pelos; largo total del ovipositor, aproximadamente 7 mm.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 2 especies.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE OBELOPHORUS

E Mystax amarillo; pelos de las tibias posteriores negros, con

un ancho anillo de pelo amarillo en la parte central;

primer segmento antenal con pelos amarilloS ...ooooocc.........

a E o ML o O. terebratus (Macquart)

1d Mystax negro; pelos de las tibias posteriores negros, algu-

nas veces con un pequeño grupo de pelos amarillos en

la parte central; primer segmento antenal con pelos negros

A o A o o. O. landbecki (Philippi)

Obelophorus landbecki (Philippi)

(Fig. 476)

Dasypogon landbeck: Philippi, 1865, p. 686, Valdivia, Colchagua.

Obelophorus landbecki (Philippi). Schiner, 1866, p 672; Brom'ey, 1932, p.

263; Stuardo, 1946, p. 83; Hull, 1962, p. 46, figs. 28, 805, 814, 1654 y

1877.

TYPO. Perdido. Un neotypo se designa en una Q (sin localidad ni fe-

cha), con una etiqueta de identificación manuscrita por Phil'ppi; este espe-

cimen está depositado en el Museo Nacional de Historia Natural, Santiago,

Chile.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO. (9). Cuerpo negro, cubierto de largos

y abundantes pelos negros y amarillos, ordenados en bien definidas áreas.

Notum cubierto por pelos negros muy cortos; mystax uniformemente negro;

tibias posteriores con pe-os largos negros, uniformemente densos.

Cabeza en vista frontal: cara cubierta por micropubescencia amarilla a

lo largo de los bordes, en el área central es negra; frente negra con pelos

negros; ocellarium negro, ocelos rojos; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista

lateral: giba facial negra, con m'cropubescencia plateada rala; mystax negro,

pelos de la parte superior más cortos que los de la parte inferior; antenas

uniformemente negras, primer segmento antenal con abundantes pelos negros

en los costados; barba negra; pelos occipitales negros; pelos postoculares ne-

gros en la parte superior y amarillos en las áreas centrales; proboscis negra

— 147 —

brillante, con pelos negros en el lado ventral y pelos cortos amarillos en el

ápice; palpos maxilares negros, con abundantes pelos negros. Protórax negro,

cubierto de pelos negros largos en el área central y pelos amarillos en los

costados; cerdas del collar indistintas, sin destacarse de entre los pelos. Meso-

pleurón negro brillante, con pelos negros y amarillos entremezclados; cerdas

mesepimerales abundantes, amarillas. Mesonotum negro brillante, área central

con micro - pelos dispersos, bordes anteriores y laterales, con pelos negros,

borde posterior con abundantes pelos amarillos; líneas centrales y manchas la-

terales indefinidas; callos humerales negros, con peos negros; callos posteriores

negros con abundantes pelos negros y amarillos, entremezclados con cerdas

amarillas; scutellum negro brillante; sin cerdas dorsocentrales; 4-5 cerdas

notopleurales negras; sin cerdas intraalares; más de 10 cerdas postalares co-

mo las descritas para los callos posteriores; disco del scutellum con abundan-

tes pelos largos amarillos; 13-15 pares de cerdas scutellares amarillas largas,

ordenadas en 2-3 filas en el borde posterior. Costados del postmesonotum

negro brillante, sin pelos. Alas hyalinas, venas negras con un halo café.

Patas negras; coxas y trocánteres con abundantes pelos negros; fémures cubier-

tos de abundantes pelos negros, tres - cuartos basales del lado dorsal con pelos

amariilos del mismo largo; cerdas de los fémures negras; pelos y cerdas de

los tarsos negras; uñas negras brillantes. Abdomen cubierto de abundantes

pelos; tergites 1, 2, 4 y 5 con pelos largos y amarillos, tergites 3 y 6 con pelos

largos negros, área dorsal del tergíte 3 con pelos amarillos entremezclados

con unos pocos pelos negros; sternites con pelos negros, largos y densos, ster-

nites 4 y 5 con una banda transversa de pelos amarillos. Ovipositor largo,

cilíndrico, angosto, que compromete desde el séptimo segmento abdominal,

vestidura del ovipositor de pelos negros ralos.

MACHO. Semejante a la hembra; genitalia negra.

MEDIDAS. Largo total 30.0-45.0 mm, promedio 34.0 mm (neotypo

45.0 mm); largo de ala 21.0 -28.0 mm); ancho de ala 6.0-8.5 mm, promedio

7.0 mm (neotypo 8.5 mm).

MATERIAL EXAMINADO: 13 y 89. Chile, ARAUCO: 19 Contul-

mo, Cord. Nahuelbuta, Ene. 20, 1964, San Feliú (INCO); CONCEPCION: 12

Coronel, Ene. 19, 1958, Stuven (INCO). MAULE: 19 Cauquenes, Abril,

1900, S. Schumann (BERL). ÑUBLE: 13% San Fabián, Ene. 15, 1958, Sepúl-

veda (INCO); 192 Termas de Chillán, Feb. 10, 1935, C. Stuardo (INCO).

O'HIGGINS: 192 Rancagua, 1900, P. H. Herbst (CAS). VALDIVIA: 192

Panguipulli, S. V. Engesser (BERL); 19 Valdivia, S. W. Bromley (INCO»;

19 [neotypo], sin localidad ni fecha, identificación manuscrita de Philippi.

Argentina: 19 Pucará, Parque Nacional Lanin, Marzo, 1951, 1. Schajevsko

(INCO).

— 148 —

DISCUSION. O. landbecki (Philippi) es facilmente reconoc'ble por su

gran tamaño, cuerpo grueso densamente cubierto de pelos negros y amari-

llos, además del negro mystax Los pelos de las tibias posteriores son negros

en los especímenes chilenos, pero una hembra de Argentina tiene unos pocos

pelos amarillos en el centro de las tibias posteriores; esto puede llevar a con-

fusión cuando se desea separar de O. terebratus (Macquart), pero en tere-

bratus hay un anillo compieto y ancho de pelos amarillos en las tibias pos-

teriores, mo solamente unos pocos pelos como en landbeck:.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 476.

Obelophorus terebratus (Macquart)

(Figs. 28 - 33, 476)

Dasypogon terebratus Macquart, 1850. p. 66, fig. 11, Chile; Blanchard in

Gay, 1852, Coquimbo.

Obelophorus terebratus (Macquart). Schiner, 1866, p. 672; Bromley, 1932, p.

263; Stuardo, 1946, p. 83; Hull, 1962, p. 46, fig. 401.

TYPO. 29 cotypos, en Museo Nacional d'Histoire Naturele, Paris (no

visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro cubierto por abundantes pelos amarillos y

negros; mystax amarillo; tibias posteriores cubiertas con pelos negros; con un

ancho anillo de pelos amarillos en la parte central.

HEMBRA. Cabeza en vista frontal: cara con micropubescencia amarilla

en los bordes laterales, al centro negra; frente negra, con pelos negros; oce-

llarium negro, ocelos amarillos; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral

(Fig. 29): giba facial negra, con micropubescencia amari'la, rala distribuida

en bandas; mystax amarillo, con una fila de pelos negros en los bordes late-

rales, los pelos de la mitad superior más cortos que los de la mitad inferior;

antenas negras, primer segmento con pelos amarillos en los costados y unos

pocos pelos negros en el dorso; barba negra, los pelos de arriba amarillos;

pelos occipitales negros; pelos del área postocular amarillos; proboscis negra

brillante con pelos negros en el lado ventral; palpos maxilares negros con

abundantes pelos negros. Mesopleuras negras, con abundantes pelos amarillos

entremezclados en algunas áreas con pelos negros; cerdas mesepimerales con

apariencia de pelos, abundantes, amarillas. Mesonotum negro brillante, con

pelos negros ralos, los cuales son más largos en los costados frontal y latera-

les, en el tercio posterior hay abundantes pelos amarillos; bandas centrales y

manchas laterales poco definidas; callos humerales negros con pe:os cortos ne-

gros; callos posteriores negros con pelos negros; abundantes cerdas postalares

— 149 —

amarillas; cerdas dorsocentrales ausentes; 4 cerdas notopleurales; cerdas intraa-

lares no definidas; disco del scuteilum con abundantes pelos amarillos, largos

y densos; 15-16 pares de largas cerdas scutellares amarillas. Costados del

postmesonotum negros brilantes, parcialmente cubiertos por micropubescencia

amarilla. Alas (Fig. 28) hyalinas, venas café oscuras rodeadas de halo café.

-Coxas y trócanteres negros com pelos negros; fémures negros con pelos largos

- amarillos, pelos en los extremos basal y apical, negros, cerdas negras; tib'as

anteriores negras, cubiertas por abundantes pelos negros, tibias medianas y

posteriores cubiertas por abundantes pelos negros pero en la parte central

hay un ancho anillo de pelos amari:los; tarsos negros, pelos y cerdas negras;

uñas negras. Tergites abdominales 1, 2, 4 y 5, con abundantes pe-os largos

amarillos, tergites 3 y 6 con pelos negros; sternites 1-3 y 6 con abundantes

pelos negros, sternites 4 y 5 con pelos amarillos. Ovipositor negro (Fig. 35)

MACHO. Semejante a la hembra; genitalia negra (Figs. 30, 31); funda

del pene según ilustración en Fig. 32.

MEDIDAS. Largo total 28 - 41 mm, promedio 37 mm; largo del ala 21 - 24

mm, promedio 23 mm; ancho de ala 6.0 -7.3, promedio 7 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 8S y 129. O'HIGGINS: 17. Rancagua,

1906, “Herbst P. (CAS). SANTIAGO: 19. Las Condes, Dic. 2%, 1959 IES

Peña “((INCO); 12 Rio Maipo, El Peumo, Nov., 1949, L. E. Peña (INGO)

1 Z Santiago, NO 1976, Puelma (BERL); 1 Santiago (INCO). VALPARAISO:

1-2 ¿Casablanca, Ene., 1937, E. P. Reed (CAS); * 5. Etmache,: Ene; 1920

(CORN); 192 Nov. 14, 1924 (USNM); 1 19 Valparaíso, A. Faz (USNM);

Ig 19 Valparaiso, A. Faz (USNM); 492 1¿ (gen. prep.) A. Faz (CORN).

Sin localidad ni fecha: 19 Chile, E. P. Reed (CAS); 19 Chile, S. Meyen

(BER) "17" Central” Chile, “A.: Faz" (USNIM);. "1.9" Ghile, E USTRCCd

(USNM).

DISCUSION: O. terebratus es constante en color, sin embargo, algunos €s-

pecimenes muestran una pilosidad menos densa debido a la edad. Algunas

variaciones en tamaño se indican en las medidas.

DISTRIBUCION GEOGRAPHICA. Según se ilustra en la Fig. 467. El

material estudiado es originario de la zona comprendida entre Valparaíso y

O'Higgins; sólo el typo fue registrado de Coquimbo por Macquart, una lo-

calidad un tanto norte en relación con el resto del material conocido; la lo-

calidad del typo no es indicada en el mapa.

—150—

OBERON Carrera £ Papavero

Oberon Carrera £ Papavero, 1962, prom

TYPO DEL GENERO: Oberon vultinus Carrera £ Papavero, 1962, por desig-

nación original.

Cabeza en yista frontal un - cuarto más ancha que alta; vertex suavemen-

te hundido; ocelarium bien desarrollado; ocelos grandes. Cabeza en vista late-

ral: área postocular un - quinto del ancho del ojo; cara plana, sin giba facial.

Antenas largas; tercer segmento antenal largo, atenuado en la punta, de una

y media vez el largo de los dos primeros segmentos comb'nados; microseg-

mento diminuto con una espina en el ápice. Mystax reducido a una o dos

filas de pelos en el borde oral y dirigidos hacia adelante y hacia abajo. Me-

sonotum con manchas variables, cubierto de corto pelo erecto; cerdas dorso-

centrales ausentes en el genotypo, pero hay 1-3 pares cerca del borde poste-

rior en las especies Chilnas. Scutellum cub'erto ¡por micropubescencia; sin

cerdas scutellares. Costados del postmesonotum con m'cropubescencia, sin pe-

los. Celda marginal abierta; R, alcanza el borde del ala antes del ápice;

R, alcanza el borde dei ala detrás del ápice; celda anal aiberta en el geno-

typo, ligeramente abierta o cerrada en las especies chilenas; M, y m forman

un ángulo de 1400. Espinas de las tibias frontales presentes. Abdomen alarga-

do. Alas alcanzan el extremo posterior del abdomen o pueden proyectarse

ligeramente más aliá de él. Genitalia masculina pequeña, rotada en 300 - 909;

hypandr:um corto y ancho; epandrium completo, no dividido, con una pro-

funda muesca en forma de V en el centro del borde posterior; gonopodos

cortos y globosos. Genitalia de la hembra truncada, con 5-6 pares de espinas

en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical, 3 especies; 2 especies en Chile.

Este género es próximo a Deromyia Philippi, pero se diferencia por te-

ner la cuarta celda posterior abierta y el tercer segmento antenal angosto; en

Deromy:a la cuarta celda posterior es cerrada y el tercer segmento antenal di-

latado en el centro.

CLAVE PARA LAS ESPECIES CHILENAS DE OBERON

ds Cuerpo café rojizo; alas hyalinas; abdomen más angosto

que el tórax; algunas cerdas en las tibias medianas más

largas que el primer segmento tarsal ...... O. fuluipes (Philippi)

1. Cuerpo negro; alas café; abdomen tan ancho como el tó-

rax; cerdas en las tibias medianas más cortas que el pri-

mer segmento ttarsal .. adn rain: O. fulvicornis (Macquart)

Oberon fulvicornis (Macquart)

(Figs. 133, 134,-158, 460)

Dasypogon fulvicornis Macquart, 1850, (nec Dasypogon fulvicornis Macquart,

1846) p. 68, Coquimbo; Blanchard, 1852, P. 366, Coquimbo.

Scylaticus fulvicornis (Macquart). Schiner, 1868, p. 163.

Triclis fulvicornis (Macquart). Bigot, 1878, p. 221.

Pritchardia fulucornis (Macquart). Stardo, 1946, p. 80.

Araipogon fulvicornis (Macquart). Carrera, 1953, p. 276; Hull, 1962, p. 282.

Oberon fulvicornis (Macquart). Carrera £* Papavero, 1962, p. 60.

COTYPOS. 1% y 29 de Coquimbo, en Museo National d'Histoire Natu-

relle, Paris, Francia no visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; patas rojas con cerdas no más largas que el

segundo segmento tarsal; tergites 2-4 o 2-5 en Y y 2-4 en Q con una

línea blanca en el borde posterior; callos humerales dorados; cara dorada;

antenas rojas; mystax de 4-4 pares de pelos negros en Y y dorados en las 9,

formando una sola fila en el borde oral; espinas de las tibias anteriores negras.

MACHO. Cabeza en vista frontal: frente uniformemente cubierta por mi-

cropubescencia dorada; mitad basal de la frente con micropubescencia platea-

da, mitad superior negra brillante; pelos frontales blancos; ocellarium negro

brillante, ocelos café rojizos; cerdas ocelares finas y blancas. Cabeza en vista

lateral (Fig. 133): mystax de 4-5 pares de pelos negros formando una sola

fila en el borde oral; antenas rojas, primer segmento con pelos negros; ter-

cer segmento comprimido, atenuado yentralmente desde el segundo tercio del

segmento, con un microsegmento cóncavo que lleva una pequeña espina blan-

ca en la concavidad; barba de escasos pelos fino blanco; cerdas occipitales ro-

jizas; área postocular con una ancha línea de micropubescencia dorada a lo

largo de los bordes posteriores de los ojos y alrededor del foramen magnum,

vestidura de pelos setiformes rojizos y negros; proboscis negra brillante con

pelos blancos, ralos, en la parte basoventral, cortos, blancos y ralos en el

ápice; palpos maxilares con gruesos pesos setiformes negros. Protórax negro

brillante con reflejos azulados y cubiertos de finos pelos blancos dispersos, los

cuales son más abundantes y entremezclados con pelos negros en los lóbulos

protoráccicos; 8 - 12 cerdas del collar de color dorado. Pleura toráccica negra

brillante con reflejos azules, con algunas líneas de micropubescencia plateada

o dorada algunas veces presentes en los bordes de los sclerites, más definidas

en el metepisternum; cerdas mesepimerales finas, piliformes, doradas, d'sper-

sas. Mesonotum negro con pelos cortos, ralos, dorados; sin líneas centrales ni

manchas laterales; callos humerales cubiertos por densa micropubescencia

dorada, formando una banda dorada que sé extiende sobre el pronotum; 2

manchas doradas frente a cada notopleurón; callos posteriores negros, con

micropubescencia dorada en la parte posterior; área posterior hasta la sutura

transversa con micropubescencia plateada; disco del scutellum con densa mi-

cropubescencia dorada, 2-3 cerdas dorsocentrales rojizas; 2 cerdas notopleura-

les rojizas; 2 cerdas intraalares rojizas; 2 cerdas postalares rojizas. Coxas y

trocánteres con micropubescencia plateada y pelos blancos los cuales son más

largos y más densos en la parte anterior de las coxas frontales y medianas;

fémures, tibias y tarsos rojizos, los tarsos más oscuros, con pelos cortos amari-

llos y cerdas rojizas. Uñas negras. Abdomen negro brillante con reflejos azu-

lados; tergites dilatados en el centro, cubiertos por pelos amarillos cortos y

deprimidos; tergites 2-4 o 2-5 con una línea blanca en el borde posterior,

corrientemente interrumpida en el dorso; sternites negros con fimos pelos

blancos ralos; 3 cerdas blancas en cada lado del primer tergite. Genitalia ro-

tada en 450-900, negra, cubierta con pelos negros entremezclados con unos

pocos pelos amarillos en los epandria; epandria cortos, dejando los cercos ex-

puestos; gonopodos cortos y globosos; hypandrium globoso, triangular, más

corto que los gonopodos (Fig. 134); funda del pene según Fig. 138.

HEMBRA. Semejante al macho pero con el mystax amarillo, una línea

blanca en el borde posterior de los tergites 2-4, el primer segmento antenal

corrientemente negro desde una vista lateral; ovipositor truncado, telescopeado,

con espinas amarillas en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 11.2 - 13.5 mm, promedio 12.5 mm; largo de ala

7.4 - 10.3 mm; promedio 8.8 mm; ancho de ala 2.3 - 3.2 mm, promedio 2.6 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 713 y 29. COQUIMBO: 23 19 El Pan-

gue, Las Trancas, Feb. 15, 1953 (1 gen. prep. MNHN, 1 19 INCO»;

13 Fray Jorge, Rancho Coquimbo, Dic. 10, 1950, R 8: M. (CAS); 19 Las

Trancas, Elqui, Ene. 20, 1940, E. P. Reed (INCO); 13 Las Cardas, Ovalle,

Feb. 13, 1953 (MNHN); 237 30 km. Illapel 5000 ft., Noy. 30, 1950 (CAS,

INCO). SANTIAGO: 1g N9 21797, El Canelo, Santiago, Ene., 1949 (BRAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 460.

DISCUSION. Para una discusión sobre el nombre Dasypogón fulvicornis,

ver discusión en Hypenetes schineri, p. 140.

= 153 —

Oberon Sulpibes: m3 combisiubo BEREEAS, SES

(Pies TIA TA AS Es

Deromyia fulvipes Philippi, 1865, p. 706, Santiago; Stuardo, -1946, p. 82;

Hull, 1962, p. 250.

TYPO. Perdido. Se designa como neotypo, un Z de Peñalolén, Dic. 8,

1955, H. Toro; este especimen está depositado en el Departamento de Zoo'o-

gía de la Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo y patas café claro, algunas cerdas en las tibias son

más largas que el primer segmento tarsal; mesonotum con 2 líneas centrales

y 2 pares de manchas laterales negras y rojas; abdomen delgado, frágil, lu-

ciéndo casi desnudo; alas hyalinas; mystax formado por una sola fila de 8

cerdas amarillas en el borde oral.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (¿G). Cabeza en vista frontal: cara,

frente y ocelarium cubierto de densa micropubescencia dorada; unos pocos

pelos finos b:ancos en la frente; ocelos blanquecinos; 2 cerdas ocelares rojizas;

mystax de 8 cerdas largas amarillas, ordenadas en una simple fila en el borde

oral. Cabeza en vista lateral: Antenas con los dos primeros segmentos de color

café claros, el primero con unos pocos pelos finos blancos, el segundo con

gruesas cerdas negras en la parte ventral y unos pocos pelos cortos y finos

alrededor del áp'ce; tercer segmento rojizo, ligeramente comprimido en los

tres - cuartos basales, y ligeramente atenuado por la parte ventral del tercio

apical, con un microsegmento cóncavo, más oscuro que el segmento y que

lleya una corta espina en la cavidad (Fig. 137). Protórax café rojizo, cubierto

de micropubescencia dorada, con unos pocos pelos finos, blancos y ralos, los

cuales son más abundantes en los lóbuios protoráccicos; dorso del pronotum

sin micropubescencia y con 2 manchas negras; 8 cerdas amarillas en el co-

llar. Pleuras toráccicas café roj'zas, cubiertas de micropubescencia dorada; 2

cerdas mesepimerales amarillas. Mesonotum densamente cubierto de micropu-

bescencia dorada, excepto sobre dos líneas centrales negras y dos pares de

manchas laterales, las cuales son de color café rojizo con una pequeña mancha

negra en el borde interior; líneas centrales cuneiformes, con el extremo agudo

hacia el borde posterior; callos humerales y posteriores, disco del scutellum y

costados del postmesonotum cubiertos como el mesonotum; 2 largas y gruesas

cerdas dorsocentraies rojizas, ubicadas detrás de la sutura transversa; 2 largas

y gruesas cerdas notopleurales rojizas; 1 cerda intraalar y 1 postalar semejante

a las cerdas notolpeurales. Alas (Fig. 139) hyalinas, venas café oscuras. Co-

xas semejantes en cubierta y color a las pleuras toráccicas, con unos pocos

pelos cerdosos en los bordes laterales y ventrales de las coxas frontales y me-

dianas, y en el lado posterior de las coxas posteriores; una mancha negra en

el borde distal de los trocánteres; trocánteres, fémures, tibias y tarsos café

154

rojizos con finos pelos cortos blancos ralos y “cerdas rojizas; cerdas de las ti-

bias más largas que las de los fémures, algunas cerdas más largas que el

primer segmento tarsal; espinas de las tibias anteriores rojas (Fig. 140).

Uñas negras. Abdomen largo, delgado, café claro, con diminutos pelos blancos

ralos; una línea negra en los bordes laterales de los tergites, excepto en el

primero; sternites semejantes a los tergites. Genitaiia café clara, rotada en

400, más ancha que el abdomen; epandrium no completamente dividido, lar-

go, ligeramente curvado ventralmente en el ápice; gonopodos globosos, más

cortos que el epandrium; hypandrium corto, triangular y globoso; cercos pro-

yectados distalmente más allá del epandrium (Fig. 135); epandrium con una

hendidura en forma de V en el borde posterior; funda del pene como en la

Fig... 141.

HEMBRA. Semejante al macho; abdomen corrientemente algo hinchado

en el medio; ovipositor atenuado; espinas de los acanthophorites café claras

(Fig. 136).

MEDIDAS. Largo total 12.2 - 16.5 mm, promedio 14.5 mm (neotypo 14.2

mm); largo de ala 8.2-11.3 mm, promedio 10.6 mm (neotypo 9.9 mm);

ancho de ala 2.4-2.9 mm,, promedio 22.7 mm (neotypo 2.6).

MATERIAL EXAMINADO. 93,119 y 1 (gen. miss.). BIO BIO: 13

(gen. prep.) Nov., -:1932, Dr. Reed (INCO). MAULE: 12 Curtiduría, 1933,

C. Porter (USNM). SANTIAGO: 1¿' Arrayán, Santiago, Ene., 1964, Etcheve-

rry (CEE) 1 9.,34.km.-W.: of Santiago, Dic. 19, 1950 : (CAS);.. 17. 12. El

Canelo, Santiago, Nov. 29, 1954, L. E. Peña (OT'T); 19 Huelquén, Santiago,

Mar. 29, 1942, L. E. Peña (MA); Las Condes, Santiago, Ramírez (CEE); 1¿gZ

Pudahuel, Oct., 1952 (MNHN); 13 [neotypo] Peñalolén, Dic. 8, 1965, H..

Toro (INCO). VALPARRAISO: 1g Parque del Salitre, Nov., 1951 (INCO);

ME Perales Ene” LIZGMINCO): re” Quillota; Ecb; 1891” (ENCO)S. "bo

Reñaca, Nov., 1932, Dr. Reed (INCO); 1 (gen. miss) Reñaca, Nov., 1940,

Dr. Reed (CAS); 192 N0 20 Perales, Ene. 1926, F. Ruiz (USNM). Localidad

Incierta: 1% Cortaderal, Feb., 1899, Schonemann S. (BERL). Sin localidad

a fecha: 1.9 "NO 156 (EINCO)7 19 (INCO); 15 (TM); 1.9 "Chile (BERE):

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 435.

DISCUSION. Ejemplares de esta especie pueden ser confundidos con

hembras de Deromyia fuscipennis Blanchard, las cuales pueden ser reconocidas

por la cuarta celda posterior cerrada, el segundo tergite con una mancha ne-

gra en el dorso y por el mystax de solo 4 cerdas en el borde oral; O. fuluipes

tiene la cuarta celda posterior abierta, el segundo terg'te uniformemente co-

loreado de café rojizo y el mystax de 8 cerdas. Un ¿ (falta la cabeza) de

la colección José Toribio Medina, tiene una etiqueta de identificación en

escritura manuscrita de Philippi: “Deromyia flava Ph. n. sp.”, este es un

nomen nudum pues nunca ha sido publicado.

=155—

PRITCHARDIA Stuardo

Pritchardia Stuardo, 1946, p. 80; Hull, 1962, pp. 35-36; Carrera ée Papavero,

Strobilopygius Hull, 1956, p.. 70. Genotypo: Dasypogon hirtipes (Macquart

1838) por designación original.

TYPO DEL GENERO. Dasypogon hirtipes Macquart, 1838, por designación

original.

Cabeza en vista frontal un - sexto más ancha que alta, vertex moderada-

mente hundido; cabeza en vista lateral con el área postocular cerca de un-

cuarto del ancho del ojo, giba facial bien desarro'lada, ocupando un - cuarto

de la parte basal de la cara. Antenas con el tercer segmento antenal pirifor-

me, no pedicelado; microsegmento corto, cónico, con una espina terminal.

Mystax de largos pelos ralos. Mesonotum cubierto de fino pelo corto y dis-

perso, cerdas dorsocentrales sólo discernibies en el tercio posterior. Scutellum

con 2 a 4 pares de cerdas scutelares. Costados del postmesonotum sin pelos.

Celda marginal ab'erta; cuarta celda posterior cerrada y pedicelada; R, alcan-

za el borde del ala antes del ápice; R, alcanza el borde del ala detrás del

ápice; celda anal cerrada y pedicelada; M, y m alineadas, formando casi una

línea recta. Espina de las tibias frontales ausente. Abdomen ligeramente

atenuado. Alas alcanzan el ápice del abdomen. Genitalia masculina moderada

en tamaño, no rotada; hypandrium triangular, fusionado con la base de los

gonopodos; epandrium en forma de forceps; gonopodos globosos en la base,

agudos ap:calmente, hendidos en el ápice. Genitalia femenina corta, aguda,

ligeramente comprimida, sin espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 4 especies.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE PRITCHARDIA

1 Fémures. uniformemente: ESTOS nte OT 2

¡Eds Fémures café rojizos y (MÉBTOS' nacen o mula... lao o UE 3

2(1); Tercer segmento antenal rojo; disco del scutellum cubierto

de micropubescencia blanca grisácea, igual cubierta sobre

el centro de la parte posterior del mesonotuM ocio...

A A CONS e A EL ca P. hirtipes (Macq.)

Pe Tercer segmento antenal negro; mesonotum sin la cubierta

blanca grisásea descrita arriba ................. P. curicoensis n. sp.

— 156 —

311”. Mesonotum con el área central negra, limitada en los bordes

laterales y posterior por una ancha franja café rojiza cu-

bierta de micropubescencia plateada ...... P. tertialis (Bromley)

je Mesonotum uniformemente negro, cubierto en el área central

por micropubescencia dorada oscura ...... P. puella (Bromley)

Pritchardia curicoensis M. sp.

(Fig. 464)

TYPO. 9, Estero La Jaula, Curicó, Ene., 1954, L. E. Peña; este ejemplar

está depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad de Con-

cepción, Chile.

DIAGNOSIS. Similar a P. puella (Bromley), pero con el cuerpo negro;

mesonotum negro, cubierto de micropubescencia amarilla; tergites abdomina-

les negros con un área café rojiza cerca del borde latero - posterior, bordes

latero - posterior y latero - anterior de los tergites con micropubescencia blanca;

fémures, tibias y tarsos uniformemente negros; tercer segmento antenal negro.

DESCRIPCION DEL TYPO (9). Cabeza en vista frontal: cara cubierta

por m'cropubescencia plateada, la cual es menos abundante bajo las antenas

y ausente en la parte frontal de la giba facial; frente negra con pelos negros;

ocellarium negro, ocelos café oscuros; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista

lateral: giba facial negra brillante en los costados, en la parte anterior con

alguna micropubescencia blanca la cual no es visible desde una vista frontal;

mystax negro; antenas uniformemente negras, los primeros y segundos seg-

mentos con pelos cortos negros; barba blanca; pelos y cerdas occip'tales ne-

gras; área postocular con cerdas negras y cortos pelos blancos; proboscis ne-

gra con largos pelos blancos en la parte ventral; palpos maxilares negros.

Protórax negro con grandes áreas cubiertas de micropubescencia plateada y

largos pelos blancos en los costados; cerdas del collar negras, con unos pocos

pelos blancos entremezclados. Mesoplurón café rojizo, la mayor parte cubierto

de micropubescencia plateada; cerdas mesepimerales en su mayoría negras,

con unas pocas cerdas blancas entremezcladas, otros pelos en el mesopleuron,

más débiles, blancos y dispersos. Mesonotum negro cubierto de micropubescen-

cia amarilla oscura; en la parte anterior del mesonotum hay una banda en

forma de U en el área anter'or; parte de los callos humerales y una área

central posterior, desprovista de micropubescencia; líneas centrales y manchas

laterales indistintas; en los callos humerales hay pelos negros; callos posterio-

res y disco del scutellum cubiertos de micropubescencia piateada; cerdas dorso-

centrales negras, más largas hacia el tercio posterior del mesonotum; 3 cerdas

= 157 —

notopleurales negras; 1 cerda intraalar negra; 2 cerdas postalares negras; 4

cerdas scutelares negras; disco del scutellum casi desnudo, solo a lo largo del

borde posterior, hay unos pocos pelos cortos negros entremezclados con las

cerdas scutelares. Costados del postmesonotum cubiertos de micropubescencia

plateada. Alas uniformemente oscuras. Coxas negras, ligeramente cafés en el

lado posterior; pelos de los costados blancos, más abundantes en la parte

anterior de las coxas frontales; trocánteres café rojizo oscuros; fémures uni-

formemente negros, cubiertos de cortos pelos blancos deprimidos, cerdas ne-

gras, algunos pelos largos en el lado ventral; tibias uniformemente negras, cu-

b'ertas con pelos cortos blancos deprimidos, entremezclados con pelos negros

del mismo largo, especialmente en las tibias medianas y posteriores; cerdas de

las tibias negras; tarsos negros, cubiertos en forma semejante a las tibias,

cerdas negras; uñas negras brillantes; tergites abdominales negros en el dorso,

costados café rojizos hacia el borde posterior; bordes anteriores, posteriores y

laterales con bien definida micropubescencia plateada, la cual es más notoria

desde una vista lateral; tergites cubiertos en el área dorsai por cortos pelos

negros deprimidos y por pelos semejantes pero blancos en los costados; costa-

dos del primer tergite con un mechón de pelos blancos y algunas cerdas ne-

gras más largas, segundo y tercer tergites con unas pocas cerdas negras a lo

largo de los costados; sternites café rojizos, cubiertos de escasa micropubescen-

cia blanca la que no alcanza a ocuitar el color del tergite; sternites 1- 6 con

una banda café brillante a lo largo dei borde posterior, esta banda se inte-

rrumpe en la parte correspondiente a la línea media dorsal; sternites 6-7

con unos pocos pelos gruesos negros. Ovipositor corto, negro, con unos pocos

pelos cortos, negros; cercos negros con cortos pelos blancos.

MACHO. Desconocido.

El nombre curicoensis se refiere a la localidad typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 9.5 mm; largo de ala 6.0 mm; an-

cho de ala 11.7 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 12. [typo] Estero La Jaula, Curicó, Ene.,

1954, L. E. Peña, ex Nothophagus sp. (OTT).

DISTRIBUCION. GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 464.

Pritchardia hirtipes (Macquart))

(Figs. 16-23, 412)

Dasypogon h'rtipes Macquart, 1939, p. 46, Chile; Blanchard ¿in Gay, 1852, p.

368, Santiago; Philippi, 1865, p. 686, Santiago.

Hypenetes hirtipes (Macquart). Stuardo, 1946, p. 80; Hull, 1962, p. 36, fig.

22, 422, 809, 818, 1659, 1909 y 2002.

Pritchardia hirtipes (Macquart). Carrera £ Papavero, 1965, p. 48, Caramavi-

da; Argentina: Parque Nacional Lanin, Neuquén ,Chubut, Lago Tuelo,

Tucumán.

TYPO (9) en el Museo National d'H'sto:re Naturelle, Paris, Francia

(no visto).

DIAGNOSIS. Cabeza y cuerpo negro, disco del scutellum cubierto de mi-

cropubescencia blanca grisácea, dando una apariencia polinosa; una gran

área del mismo color y vestidura en la parte postero central del mesonotum.

Patas uniformemente negras. Alas oscuras. Tercer segmento antenal rojizo.

MACHO. Cabeza en vista frontal: frente negra, con pelos negros, ocella-

rium negro, con pelos negros; cara cubierta de micropubescencia amarillenta,

dejando descubierta una área oscura bajo las antenas. Cabeza en vista lateral

(Fig. 16): giba facial negra brillante; mystax de abundantes cerdas negras que

nacen desde ia parte anterior de la giba facial; primero y segundo segmento

antenal negros con pelos negros, tercer segmento antenal rojo; parte infer/or

de la cara y base de la giba facial con abundantes micro-pelos blancos; pro-

boscis negra, con pelos blancos en el lado ventral; barba de abundantes pelos

largos blancos; occipucio y mitad superior de la región postocular con abun-

dantes pe-os negros; palpos maxilares negros con pelos largos ralos. Protórax

negro, con pelos largos blancos entremezclados con algunos pelos negros de

igual longitud; cerdas del collar largas, negras; costados del protórax con

abundantes pelos largos blancos. Mesopleurón negro, con pequeñas áreas de

micropubescencia amarilia y plateada; cerdas mesepimerales negras y blancas

entremezcladas; mesop!eura con un grupo de pelos blancos y finos localizados

cerca del borde posterior. Mesonotum negro, cubierto de pelos cortos negros y

ralos, los cuales son más largos en el tercio posterior; líneas centrales indicadas

por dos cortas líneas café dorado en el área central, y dos marcas alargadas

blancas, bordeadas en la parte interior por una línea café dorada; estas dos

últimas líneas parecen conectadas por una gran área blanca en la parte central

del tercio posterior del mesonotum; manchas laterales claramente discernib-es;

callos humeraies ligeramente coloreados de café dorado en la parte superior;

pelos humerales negros; callos posteriores negros,con áreas blanquecinas pró-

ximas al scutellum; scutellum blanco grisáseo, semejante en color y vestidura

al área del tercio central del mesonotum; 3 cerdas notopieurales negras; 2 cer-

— 159

das intraalares negras; cerdas postalares negras, dos gruesas y una fina; disco

del scutellum no con más de 10 pelos negros y finos, local'zados principalmente

cerca del borde posterior; 10 largas cerdas scutellarés negras; costados del

postmesonotum con micropubescencia café. Alas (Fig. 18) café oscuro intenso,

casi negras, ligeramente más claras en el centro de algunas celdas. Coxas y

trocánteres rojo oscuro, con pelos blancos, los cuales son más abundantes en

la parte anterior de las coxas medianas y frontales, las coxas posteriores tienen

además algunos pelos negros; tibias, fémures y tarsos megros, cubiertos de

abundantes pelos largos negros, en la base de los fémures hay algunos pelos

blancos entremezclados; todas las cerdas de los fémures, tibias y tarsos negras;

uñas negras, ligeramente roj'zas en la base. Abdomen negro, tergites 2-5 con

definidos bordes blancos en los costados; parte dorsal de los tergites cubiertos

de pelos cortos negros; primeros 5 sternites con largos pelos blancos, los dos

últimos segmentos abdominales y la genitalia con gruesos pelos negros; tergites

2-5 con unos pocos pelos cerdosos, largos y blancos en los costados, especial-

mente cerca del borde posterior. Genitalia del macho (Fig. 17, 20) oscura,

epandrium negro; gonopodos negros en la base, café roj'zos cerca del ápice;

hypandrium café claro, ligeramente más oscuro a lo largo de la fusión con

los gonopodos; funda del pene como en la Fig. 19.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Figs. 21, 22) corto, negro,

cubiertos con pelos cortos, ralos, entremezclados negros con blancos; pelos

de los cercos cortos, blanquecinos.

MEDIDAS. Largo total 10.0 - 14.0 mm, promedio 13.0 mm; largo de ala

6.5 - 9.5 mm, promedio 9.0 mm; ancho de ala 1.6 -2.5 mm, promedio 2.2 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 17% y 209. ARAUCO: 12 Caramávida,

1000 m., Dic. 25-31, 1954, L. E. Peña (BRAS); 19 Caramávida, Ene. 1-6,

1954, L. E. Peña (gen. prep.) (INCO); 1 Contulmo, Feb. 2, 1904, S. Schone-

mann (BERL); 1% Peillem-Pilli, Cord. Nahue.buta 600-800 m., Ene. 13,

1954, L. E. Peña (INCO). CAUTIN: 17 20 km. E. of Temuco, Ene. 7, 1957

(CAS); 1 19 Ene. 8, 1951 (CAS); 17 Toltén, “Eeb."101957H(USNEN

CHILOE: 27 Dalcahue, Isla. Chiloé; Ene. 1731-1962. "L. “EPena (OS

NG Lo Feb. 1-8, 1962, L. E. Peña (OTE); 1" Castro, Ene, 1932 Mco)

(CAS). CONCEPCION: 17 Concepción, Dic. 25, 1958, Ametller (INCO): 19

Dic. 23, 1959. Lagos (INCO). Curicó, Estero La Jaula, Ene., 1964, L. E. Peña

(ex Notophagus sp.) (OTT). LLANQUIHUE: 19 Casa Pangue, Dic., 1926,

R. £c E. Shannon (INCO); 17 Ensenada, Ene. 13-15, 1952, L. E. Peña (OTT);

13 Dic. 14-15, 1926, R. £ M. Edwards (BRIT); 19 Los Muermos (forest),

Ene. 20, 1951 (CAS). MAULE: 1g Constitución, Nov. 27, 1953, L. E. Peña

(INCO). MALLECO: 192 Angol, Nov. 29, 1958, G. Contreras (INCO); 12

Nov. 29, 1958, L. Villa (INCO); 13 Nov. 6, 1961, W. Klockey (INCO); 22

160

Angol (Nahuelbuta), Nov. 25, Fetis (INCO); 13 Nov. 28, 1958, J. Hahn

(INCO). ÑUBLE: 13 Tregualemu, Dic. 6, 1953, L. E. Peña (OTT). SAN-

TIAGO: 124 El Canelo, Nov., 1937, F. Ruiz (USNM); 19 Santiago, A. Faz

(USNM). TALCA: 19 Radal (900-100 m), Nov. 23-30, 1957, L. E. Peña

(INCO). VALDIVIA: 1g Valdivia, 1885, P. Herbst (CAS). Valparaíso: 1¿G

south slope of Bell Mtn. 3000”, Valparaíso, Dic. 17, 1951 (INCO). Sin localidad

ni fecha: 13 Chile, Dr. Reed (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 412.

DISCUSION. P. hirtipes puede ser reconocida fácilmente por la mancha

blanca en la parte posterior del mesonotum y en el disco del scutellum. En

algunos ejemplares este carácter puede estar poco destacado, especialmente si

éste presenta el cuerpo sucio con grasa. En largas series, se encuentran algunas

variaciones en tamaño según se indica en las medidas.

Pritchardia tertialis (Bromley)

(Figs. 24-27, 481)

Hypenetes tertialis Bromley, 1932, p. 265, Casa Pangue, L. Nahuel Huapi,

Puerto Blest, L. Correntoso; Hull, 1962, p. 154.

Pritchardia tertialis (Bromley). Stuardo, 1946, p. 80; Carrera £ Papavero,

1965, pp. 48-49, Chile: Osorno, Puerto Puyehue; Arauco, Pichinahuel.

Argentina: Bariloche, Llao-Llao; Neuquén, Pucará, Parque Nacional

Lanin.

TYPO: ¿Z, Casa Pangue, Lanquihue, Chile, en el British Museum (no

visto).

DIAGNOSIS. Especie oscura, área anterior y central del mesonotum ne-

gra, y una ancha área lateral y posterior café rojiza cubierta por micropu-

bescencia plateada la cual se extiende sobre el disco del scutellum; tercer

segmento antenal rojo; fémures de café rojizo a negro; alas uniformemente

café oscuras.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara plateada, negra bajo las antenas

y sobre la g'ba facial; frente negra con pelos negros; ocellarium negro, ocelos

café claros, cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral: giba facial negra

brillante; mystax uniformemente negra; primero y segundo segmento antenal

negro, con abundantes pelos negros; tercer segmento antenal rojo, tendiente

a negro en la base; barba blanca; pelos occipitales negros; pelos postoculares

— 161 —

negros; proboscis negra brillante con largos pelos blancos en el lado ventral;

palpos maxilares negros con pelos negros. Protórax negro, con grandes áreas

plateadas en los costados; pronotum cubierto con pelos blancos; cerdas del

collar negras. Mesopleurón café rojizo con abundantes áreas plateadas y unos

pozos peos finos; cerdas mesepimerales negras. Mesonotum negro con una

ancha área lateral y posterior café rojiza cub'erta de micropubescencia pla-

tezda la cual se extiende sobre el disco del scutellum; líneas centrales y man-

chas laterales no claramente definidas; pelos del mesonotum cortos y negros,

haciéndose más largos hacia el área posterior; cailos humerales café rojizos,

plateados dorsalmente, pelos negros; callos posteriores semejantes en color a

los callos humerales; disco del scutellum rojizo, cubierto de micropubescencia

plateada; cerdas dor:ocentrales negras, distingu'bles so-o en el tercio posterior

del mesonotum; 2 gruesas cerdas notopleurales negras; 2 largas cerdas imtra-

alares negras; 2 largas cerdas postalares negras; pelos del disco del scutel_um

finos, ralos y negros; 6-7 largas cerdas scutelares, entremezciadas con largos

pe os negros aproximadamente en igual cantidad; costados del postmesonotum

rojizos con fina micropubescencia plateada. Alas uniformemente café oscuras,

ligeramente más cara a lo largo de algunas venas basales. Coxas café rojizas,

con una pequeña área en el borde basofrontal, pelos de las coxas biancos,

abundantes en la parte anterior de las coxas anteriores; trocánteres negros;

fémures negros con una ancha banda café rojiza a lo largo de la parte dorsal,

pelos y cerdas de los fémures negros; t'bias café oscuras, casi negras, tibias

anteriores con pelos y cerdas negras; tibias medianas con cerdas negras entre-

mezcladas con pelos cortos y blancos; tibias posteriores cubiertas de abundantes

“pelos cortos aprensados, cerdas negras; tarzos negros con pelos y cerdas negras;

uñas negras bri:lantes. Abdomen café rojizo, área dorsal de los tergites negra,

cubierta de abundantes pelos cortos, negros, aprensados; sternites 1-5 con

pelos blancos, largos y ralos; tergites y sternites 5-8 con pelos negros; borde

poster or de los tergites con largos pelos blancos a lo largo de los costados.

Genital 'a (Fig. 24) café roj:za, cubierta de pe.os negros, no rotada; epandrium

en forma de forceps, más oscuro hacia el ápice; gonopodos café rojizos, negros

en el ápice; hypandrium café; funda del pene según ¡.ustración en Fig. 25.

HEMBRA. Semejante al macho, ovipositor (Figs. 25-27) negros, corto,

puntudo, cubierto de pelos negros ralos; cercos negros brillantes con los pelos

cortos blancos ralos.

MEDIDAS. Largo total 7.5- 11.0 mm, promedio 10,5 mm; largo del ala

5.5 - 7.0 mm, promedio 6.5 mm; ancho de ala 1.4-1.8 mm, promedio 1.6 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 63 y 69. ARAUCO: 1 2. Alto de Caicupil,

1300 m., Ene. 8, 1954 (OTT); 19 Caramávida, Ene. 1-6, 1954, L. E. Peña

(OTT); 17 Pichinahue:, Cordillera de Nahuelbuta, 1100-1400 m., Ene. 31,

— 162

105 s LE: Peña -(INCO); 159 1200::m., Feb: 1956, L. E. Peña (BRAS).

LLANQUIHUE: 19 Casa Pangue, Dic., 1926, R. £ E. Shannon (USMN).

MALLECO: 13 Río Blanco, Marzo 5-27, 1951, L. E. Peña (CORN); 1G

Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol, 1200 m., Ene. 3, 1951,-Ross -£ Michel.

(CAS); 13 Ene. 2, 1951 (INCO). Argentina. RIO NEGRO: 1G Correntoso,

Nov., 1925, R. £ E. Shannon (USNM); 1 19 [paratypos], Nov. 18-25,

1926, F. £ M. Edwards (BRIT); 17 Bariloche, Nov., 1926, R. € E. Shannon

(USNM); 13 Port Puyehue, 1300 - 1460 m., Mar. 13.19, 1955 (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 481.

DISCUSION. P. tertialis puede ser fácilmente reconocida por la colora-

ción del mesonotum. Esta especie es constante en color, pero se han encon-

trado algunas variaciones en tamaño las que pueden desprenderse de las

medidas anotadas.

Al aclarar el abdomen de una hembra de Caramávida, Ene. 1-6, 1954,

se encontraron 8 huevos en el interior. La forma y tamaño de estos huevos

se muestran en la Fig. 23.

Pritchardia puella (Bromley)

(Fig. 472)

Hypenetes puella Bromely, 1932, p. 264, Peulla. -

Pritchardia puella (Bromley). Stuardo, 1946, p.-80 (n. g.); Hull, 1962, p. 36,

figs. 45, 1020, 1029, 1884; Carrera € Papavero, 1965, p. 48, 49, Neuquén,

Pucará, Argentina.

TYPO, G.. Peulla, Chile, en el British Museum (no visto).

DIAGNOSIS. Especie oscura, con pleuras café roj'zas; - mesonotum y

scutellum uniformemente negro; fémures negros con una banda café oscura

en el lado dorsal; tibias café rojizo oscuras; tercer segmento antenal negro;

tergites abdominales negros; genitalia del macho café rojiza; alas oscuras,

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara negra con micropubescencia pla-

teada a lo largo de los bordes de los ojos y en la parte inferior de la giba facial;

frente negra con pelos negros; ocellarium negro; ocelos café roj'zos, cerdas

ocelares negras. Cabeza en vista lateral: giba facial negra; mystax negro; antenas

negras, pelos negros en los primeros y segundos segmentos antenales; barba

blanca; cerdas y pelos occipitales negros; cerdas postoculares negras; pro-

boscis negra brillante con escasos pelos largos blancos en el lado ventral;

palpos maxilares negros con escasos pelos negros. Protorax café, collar negro,

con largos pelos blancos en los costados; cerdas del collar negras. Mesopleuron

-—=163—

café oscuro, con manchas irregulares de micropubescencia plateada; cerdas

mesepimerales negras con algunas cerdas blancas entremezcladas. Mesonotum

negro con algunas manchas poco definidas de micropubescencia dorada; pelos

del mesonotum cortos, d'spersos y negros; callos posteriores y humerales negros

o café rojizos; líneas centrales y manchas laterales poco definidas; pelos de

los callos humerales negros; disco del scutellum negro; 3 cerdas dorsocentrales

en el tercio posterior del mesonotum; 3 cerdas notopleurales negras; 2 cerdas

intraalares negras; 2 cerdas postalares largas y una corta, las tres negras; disco

del scutellum con unos pocos pelos negros cortos; 6-8 cerdas scutellares,

algunas más cortas y finas que las restantes, por lo menos 6 son largas y gruesas.

Costados del postmesonotum con algo de micropubescencia plateada. Alas uni-

formemente oscuras. Coxas frontales café rojizas con abundantes pelos blancos

en el lado anterior; coxas medianas y posteriores café rojizas con una gran

área negra en la parte anteroventral, pelos blancos; trocánteres roj'zos y negros;

fémures anteriores negros en el lado ventral y café rojizos en el lado dorsal.

cubiertos con pelos blancos, los cuales son más largos en el lado dorsal; fé-

mures medianos y posteriores negros, con una ancha banda café rojiza en el

lado dorsal, pelos blancos, cerdas negras; café rojizas oscuras, generalmente

más oscuras en los lados exteriores y dorsal, cubiertas de abundantes pelos

cortos y negros, cerdas negras; tarsos del mismo color y vestidura que las tibias;

uñas negras bri-lantes. Tergites abdominales negros brillantes en el dorso,

cubiertos de pelos cortos, aprensados, entremezclados negros con blancos;

costados de los tergites café rojizos, en algunos especímenes con bien definida

micropubescencia plateada; sternites café rojizos, con pe:os negros largos ralos;

costado de los tergites con una fila de 3-5 cerdas largas y negras en el borde

posterior, estas cerdas son más largas y gruesas en los dos primeros segmentos

abdominales. Genitalia café rojiza brillante, cubierta de gruesos pelos cerdosos,

semejantes a los de los 3 últimos sternites; epandria en forma de forceps, más

oscuros hacia el ápice; gonopodos oscuros en la base y en el ápice; hypandrium

café rojizo.

HEMBRA. Semejante al macho; costado ventral del abdomen menos pi-

loso que en el macho por lo menos en los 4 primeros sternites; ovipositor

corto, más bien cónico, cubierto por cortos pelos negros ralos; cercos negros

bri-lantes con pelos cortos blanquecinos.

MEDIDAS. Largo total 7.5-9.0 mm, promedio 8.5 mm; largo de ala

4.5-5.2 mm, promed o 4.8 mm; ancho de ala 1.3-1.6 mm, promedio 1.5 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 19%. COQUIMBO: 1gG 50 km. S.

La Serena, Dic. 1950, R. £ M. (CAS). VALPARAISO: 13 Olmué, Dic., 1929,

Dr. Reed (INCO); 19 Valparaiso, P. Herbst (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 472.

— 164 —

DISCUSION. De esta especie se conocen solo 5 ejemplares, de ellos 3

fueron vistos; la coloración y la mayoría de las estructuras son constantes,

solo la coloración de los costados del abdomen varía, pero esta se debe más

bien a la condición grasosa de algunos especímenes que oculta la micropu-

bescencia.

PROLEPSIS Walker

Prolepsis Walker, 1851, p. 101; Hull, 1962, p. 138.

Cocodaemon Schiner, 1866, p. 671 (preocupado Coleóptera, 1857).

Cocodaemonides Strand, 1928, p. 48 (cambio innecesar'o).

TYPO DEL GENERO, Dasypogon lucifer Wiedeman, 1828, por monotipía

(como Prolepsis fumiflama Walker, 1851).

Cabeza en vista frontal más deun -terciomás anchaque alta, vertex li-

geramente hundido; ocelarium bajo y aplastado. Cabeza en vista lateral: área

postocular un - octavo del ancho de los ojos; giba facial presente, ocupando

cuatro - quintos de la cara, parte frontal de la giba facial más o menos aplas-

tada. Antenas largas, primer segmento cilíndrico, tres veces más largo que el

segundo el cual es subesférico; tercer segmento grande, largo, tres veces los

dos anteriores combinados, con un pequeño microsegmento en forma de copa,

que lleva una corta espina terminal. Mystax de cerdas que nacen en forma

dispersa por sobre toda la giba facial. Mesonotum con manchas variabies,

vestidura poco abundante, área central casi desnuda, con algunos pelos y

cerdas de tamaño mediano a lo largo de los bordes; cerdas dorsocentrales pre-

sentes. Scutellum con micropubescencia y unos pocos pelos cortos; 1-4 pares

de cerdas scutelares. Costados del postmesonotum con micropubescencia, sin

pelos. Celda marginal abierta; celda costal con 2 o más venas transversales en

el tercio apical; cuarta celda posterior cerrada y pedicelada; R, alcanza el

borde del ala antes del ápice; R, alcanza el borde del ala detrás del ápice;

ceida anal cerrada en el borde del ala o ligramente abierta; M, y m forman

un ángulo de 1500, Sin espinas en las tibias anteriores; fémures medianos

con una gran área multiespinosa en el lado ventral (Fig. 142). Abdomen

atenuado. Alas proyectadas más allá del exteremo del abdomen. Genitalia

del macho pequeña, rotada en 1800; hypandrium triangular, diminuto; gono-

podos globosos, con un gancho; entre los gonopodos y el hypandrium queda

una cavidad abierta; epandrios divididos, moderadamente doblados hacia arri-

ba en el extremo. Genitalia de la hembra truncada; 5-6 pares de espinas agu-

das, de base triangular, en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical, 3 especies; 1 especie en Chile, Prolepsis

quadrinotata (Bi:got).

— 165 —

A Prolepsis quadrinotata (Bigot) - -

(Figs. 142-147, 412)

«Cacodaemon quadrinotatum Bigot, 1878, p. 431, Chile.

Prolepsis quadrinotatus (Bigot), Stuardo, 1946, p. 83.

Prolepsis cuadrinotata (Bigot). Hull, 1962, p. 139.

TYPO. ¿, Chile, sin fecha ni localidad, coll. Bigot NO 190, type Dip.

163, en el Hope Department of Entomology, Oxford University, Ingiaterra

(Visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro, patas café oscuras, abdomen café oscuro con

reflejos azulados; alas café oscuras con una larga banda de color naranja

ocupando más de la mitad de las celdas costal, subcostai y marginal; notum

con 2 anchas lineas blancas convergentes en la parte anterior y 2 manchas

blancas en la sutura transversa.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara cubierta de corta micropubescen-

cia plateada, excepto en la giba facial la cual luce café rojiza; frente negra,

micropubescencia plateada a lo largo del borde de los ojos; pelos frontales

en su mayoría blancos, unos pocos negros entremezclados cerca de la base de

las antenas; ocellarium negro, ocelos rojizos; cerdas ocezares blancas. Cabeza

en vista lateral (Fig. 143); cara con micropubescencia plateada entre las bases

de las antenas y el mystax y a lo largo de los bordes de los ojos; giba facial

café oscura; mystax blanco, algunas veces con unos pocos pelos negros entre-

mezclados; primeros y segundos segmentos antenales café ciaros, con pelos

negros, tercer segmento café oscuro, corto, con un corto microsegmento que

lleva una espina blanquecina en el extremo (Fig. 144); barba corta, rala,

negra o blanca, pelos occipitales en su mayoría blancos; cerdas occipitales

indefinidas; borde posterior de los ojos negro, con pelos negros; proboscis

larga, café oscura brillante, claramente deprimida en ei cuarto apical, mitad

basoventral con unos pocos pelos blancos entremezclados con finos pelos ne-

gros, pelos cortos amarillos en el ápice; palpos maxilares café oscuros con pelos

negros. Protórax negro, con pelos negros, coliar con abundantes pelos negros

erectos, cerdas semejantes a los pelos; dorso del pronotum con micropubescencia

café dorada, rala. Pleuras toráccicas café oscuras, casi negras, con finos pelos

negros ralos; cerdas mesepimerales negras. Mesonotum negro, líneas centrales

y manchas laterales poco definidas; vestidura del notum de pelos cortos*finos

y ralos, la mayoría biancos en la mitad anterior y negros en su mayoría detrás

de la sutura transversa; 2 anchas líneas oblicuas de micropubescencia plateada

cerca del borde anterior y 2 manchas. subiguales, blancas, en la sutura trans-

versa; disco del scute.lum, callos humerales, y callos posteriores café oscuros,

casi negros; scutelum con micropubesencia plateada, rala, cerca del borde

— 166—

posterior; 5 cerdas dorsocentrales negras cerca del borde posterior; 3-5 cerdas

notopleurales negras, entremezcladas con pelos del mismo largo y color; 3-4

cerdas intraalares negras; 2 cerdas postalares largas y 1-3 cortas, negras; 1 par

(fa:tan en ambos ejemplares) de cerdas scutellares. Costados del postmesonotum

café oscuros, parcialmente cubiertos por micropubescencia café dorada. Alas

(Fig. 145) café oscuras, más claras hacia el borde posteror; celda costal, más

allá de la vena humeral, anaranjada, los tres - cuartos de la celda subcostal y

la celda marginal, también anaranjadas; 2-6 venas transversas en la ceda

subcostal; venas café oscuras. Coxas café oscuras, con micropubescencia dorada

rala y pelos blancos con algunos pelos negros entremezclados, los pelos más

abundantes en el costado anterior de las coxas medianas; trocánteres de color

semejante al de las coxas, trocánteres anteriores con unas pocas cerdas gruesas

en el lado ventral; fémures, tibias y tarsos café oscuros con pelos negros y cerdas

cortas negras; fémures medianos con un gran número de cerdas cortas y gruesas

en forma de espinas en la parte ventral, 6 de ellas más largas que las restantes

(Fig. 142). Uñas negras, café rojizas en el tercio basal. Abdomen café oscuro

con reflejos azulados, cubierto de cortos pelos negros ralos, en el borde pos-

terior de los tergites el pelo es blanco; costados del primero y segundo tergites

con abundantes peos negros entremezclados con unos pocos pelos blancos;

tergite7 con largos pelos amarillentos en el borde posterior; sternites semejantes

a los tergites pero con el pelo más largo. Genitalia negra, con abundantes

pelos largos y negros; hypandrium pequeño, agudo en el ápice; gonopodos

de la mitad del largo de los epandrios (Figs. 145, 147).

HEMBRA. Desconocida.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 16.0 mm; largo de ala 12.5 mm;

ancho de ala 3.9 mm; ambos especímenes estudiados son de igual tamaño.

MATERIAL EXAMINADO. 2G. Argentina: 1% Córdoba, Davis, Brom-

ley Coll. (INCO). Sim localidad ni fecha: 13 [typo] NY 190 en Coll. Bigot,

Dip. type NO 163 (OXP).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 412.

DISCUSION. Se conocen solo 2 especímenes, ambos fueron estudiados. El

typo es descrito por Bigot como de Chile, pero en la etiqueta original solo

se lee: “D-3”, no existiendo ninguna indicación de localidad ni fecha. La

localidad indicada por Bigot podría ser un error considerando que hasta la

fecha no se ha colectado ningún otro ejemplar en Chile. El ejemplar de

Argentina es un individuo joven con ei abdomen y el tórax incompletamente

endurecidos; este individuo difiere del Typo por tener algunos pelos negros

entremezclados en el blanco mystax; la gran mancha anaranjada del área costal

no se distingue; tiene solo 2 venas transversas en el extremo de la celda postal

y además los pelos de la barba son negros.

SAROPOGON Loew

Saropogon Loew, 1847, p. 439; Hull, 1962, p. 276.

Sarapagon Williston, 1891, p. 74 (lapsus).

TYPO DEL GENERO: Dasypogon luctuosus Wiedemann, designado por Co-

quillet 1910.

Cabeza en vista frontal un - tercio más ancha que alta; vertex moderada-

mente hundido; ocellarium bajo. Cabeza en vista lateral: área postocular un -

cuarto del ancho del ojo; cara plana, más proyectada en la parte infer'or;

antenas con el tercer segmento más de dos veces el largo de los dos primeros

segmentos combinados, con un corto microsegmento apical; mystax largo, co-

rrientemente cerca del borde oral. Mesonotum uniformemente coloreado, de

aspecto desnudo, con diminuto vello en el centro. Scute:lum con micropubes-

cencia, 1-4 pares de cerdas scutelares. Costados del postmesonotum sin pelos.

Celda marginal abierta; cuarta celda posterior abierta; R, alcanza el borde del

ala antes del ápice; R, alcanza el margen del ala detrás del ápice; celda anal

b'en abierta o apenas cerrada; M, y m forman un ángulo de 1000 - 1200, Espina

de las tibias anteriores presente. Abdomen generalmente cilíndrico, ocasional-

mente aplastado en la línea media de los tergites. Genitalia del macho atenuada

en el extremo distal; epandrium no dividido, hendido en el ápice, algunas

veces totalmente hendido y algo traslapado pero nunca en forma de forceps.

Hembra con espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neártica, Neotropical, Paleártica, Etiópica, Oriental,

Australiana, 90 especies; 1 en Chile.

DISCUSION. La presencia en Chile de este género podría ponerse en

duda si en el futuro no se colecta más material.

Saropogon nigronasutus (Bigot)

(Eres cla l 182)

Saropogon nigronasutum Bigot, 1878, p. 414, Chile; Stuardo, 1946, p. 82.

Saropogon nigronasutus Bigot. Kertesz, 1909, p. 139; Hull, 1962, p. 278.

Sarapogon nigronasutus Bigot. Williston, 1891, p. 74 (lapsus).

TYPO. Probablemente un ¿F etiquetado $. nigrotarsatum Bigot, Chile,

101 en Coll Bigot; este especimen está en el Hope Department of Entomology,

Oxford University, Inglaterra (visto).

DIOGNOSIS. Cuerpo, coxas y trocánteres negros, callos humerales y pos-

teriores rojizos; borde posterior de los tergites 2 - 4 rojizo; mystax blanco, denso;

— 168 —

antenas negras; fémures, tibias y tarsos café rojizos; alas en su mayor parte

hyalinas, café oscuras desde el borde costal hasta la segunda celda basal.

REDESCRIPCION DEL TYPO (G). (S. nigrotarsatum). Cabeza en vista

frontal: cara cubierta de densa micropubescencia excepto en un área en forma

de V que encierra el ocelarium, el cual es desnudo; pelos frontales blancos;

ocelarium negro; ocelos café claros; cerdas ocelares destruidas en este ejem-

plar. Cabeza en vista lateral (Fig. 182): cara plateada, negra en el costado

ventral; mystax de 5-6 filas de pelos blancos, densos, los últimos dos pelos

en cada costado son negros; tercer segmento negro; con micropubescencia

negra, rala, ligeramente más ancho que el ápice del segundo segmento y casi

dos veces más largo que los dos primeros segmentos combinados, el micro-

segmento terminal falta en este especimen; barba de pelos cortos negros dis-

persos, semejantes a los de la parte inferior del área postocular; área postocular

negra con micropubescencia plateada a lo largo de los bordes de los ojos,

cobertura de pelos negros, cerdas occipitales cortas, gruesas y negras. Protórax

negro brillante, pezos negros, más abundantes en el lóbulo protorácico; cerdas

del collar gruesas negras, entremezcladas con finos pelos negros; 2 manchas

de micropubescencia plateada en el dorso. Pleuras toráccicas negras brillantes,

desnudas; cerdas mesepimerales negras, entremezcladas con finos pelos negros.

Mesonotum negro, cubierto de pelos negros, cortos y ralos; sin líneas centrales

ni manchas laterales; callos posteriores y humerales rojizos, con micropubes-

cencia plateada, rala, extendiéndose hacia el pronotum hasta conectarse con

las manchas plateadas del pronoto, posteriormente alcanza los callos posterio-

res; scute.lum negro, con micropubescencia plateada rala; 3 pares de gruesas

cerdas dorsocentrales negras, ubicadas posteriormente a la sutura transversa;

3 cerdas notopleurales negras; 3 cerdas intraalares negras; 2 gruesas cerdas

postalares negras; 2 pares de largas cerdas scutelares negras. Costados del

postmesonotum con densa micropubescencia amarilla. Alas en su mayoría

hvalinas, café oscuras desde el borde costal hasta la segunda celda basal, venas

café oscuras. Coxas y trocánteres desnudos, brillantes, negros, con pelos negros,

más abundantes en el lado anterior de las coxas frontales; fémures, tibias y

tarsos roj'zos, con diminutos pelos negros dispersos; sin cerdas en los fémures

anteriores; fémures medianos con cerdas negras cerca del ápice en el lado

externo; fémures posteriores con 1 cerda negra en el tercio basal exterior; tibias

y tarsos con varias cerdas cortas y negras; uñas negras, cuarto basal roj:zo.

Abdomen negro, con diminutos pelos negros sobre los tergites y los sternites;

bordes posteriores de los tergites 2-4, blanquecinos, menos destacado en el

dorso; en el tergite 4 hay una bien definida banda rojo oscuro sobre el dorso.

Genitalia (Fig. 181) negra, rotada en 450, con pelos cerdosos negros; epandrium

con una hedidura en forma de V en el borde posterior; gonopodos globosos

con un gancho terminal; hypandrium corto, triangular, que deja expuesta la

cavidad genital.

— 169 —

- . HEMBRA. desconocida.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 15.0 mm; largo del ala 12.2 mm;

ancho del ala 3.4 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 173 [typo] Chile, N? 101 Co!l. Bigot, eti-

quetado: $. nigrotarsatum ¿ J. B'got, CHILI” (OXF).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Desconocida.

DISCUSION. El ejemplar estudiado tiene una etiqueta con el siguiente

párrafo: “Saropogon nigrotarsatum is nomen nudum. This specimen is possibly

the type of S. nigronasutum Bigot, 1875. Ann. Soc. Ent. France (S) 8: 414

[K. G. V. Smith and E. Taylor 1965]”. Es un hecho que la descripción de Bigot

se ajusta al espécimen. Considerando que no existe otro fuera del anotado,

propongo a este como el typo de Saropogon nigronasutus (Bigot).

El ejemplar tiene el epandrium sin dividirse completamente (Fig. 181) y

la cara proyectada más adelante que el límite de los ojos, por lo que es un

Saropogon y no un Aralopogon. Considerando que este es el único dato sobre

un Saropogon colectado en Chi.e, existe la posibilidad que se trate de un

error de etiquetación original.

SCYLATICUS Loew

Scylaticus Loew 1858, p. 346, Huli, 1962, p. 144.

Euthrix Philippi 1865, p. 690. (Preocupado Lepidoptera, 1830).

TYPO DEL GENERO: Scylaticus zonatus Loew 1858, por monot'pía.

Cabeza en vista frontal dos- quintos más ancha que alta; vertex mode-

radamente hundido; ocelarium moderado. Cabeza en vista lateral: área post-

ocular un - cuarto del ancho de los ojos; giba facial bien desarrollada, ocupando

la mitad o tres-cuartos de la cara, o también aplastada, algunas veces solo

ligeramente producida en el borde oral. Antenas largas, tercer segmento largo,

comprimido, ligeramente atenuado en el tercio ventral apical; m'crosegmento

corto, corrientemente excavado en el ápice, con una corta espina en el centro

de la cavidad. Mystax variable, abundante en especies con giba facial bien

desarroliada o reducido a 2-4 filas de pelos densos o ralos en el borde oral,

en especies con giba facial ausente o poco desarroliada. Mesonotum con

manchas ben definidas o negro al centro con líneas plateadas alrededor; co-

bertura de pelos cortos, corrientemente con pelos más largos destrás de la

sutura transversa. Scutellum cubierto con micropubescencia, en algunas especies

con unos pocos pe.os cortos; 3-8 pares de cerdas scutelares. Costados del post-

mesonotum con micropubescencia, sin pezos. Celda marginal abierta; cuarta

— 170 —

celda posterior abierta; Ry, alcanza el borde del ala antes del ápice; R, alcanza

el borde del ala después del áp'ce; celda anal abierta; M, y m forman un

ángulo de 1202-1409. Espinas de las tibias anteriores ausentes. Abdomen

cilíndrico o subcónico. Las alas se extienden hasta o ligeramente más allá del

extremo del abdomen. Genitalia masculina entre moderada y pequeña, rotada

en 907; hypandrium de moderado a pequeño, rectangular o triangular; epandria

variables corrientemente doblados en el extremo; gonopodos grandes, globosos,

con un variable proceso distal y un gancho; funda del pene con o sin 2

largos procesos apicales. Genitalia de ia hembra truncada, con 5 pares de

espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical, Pa'eártica, Etiópica, Oriental, 31 especies;

5 especies en Chile.

DISCUSION. S. rufipes y S. venustus tienen 2 largos procesos en la funda

del pene; estos procesos están ausentes en $. chilensis y S. lugens; no se estu-

diaron estructuras internas de la genitalia de S. cuneigaster. Las especies con

procesos apicales en la funda del pene poseen ia giba facial reducida y el

mystax confinado al borde oral, mientras que las especies sin estos procesos

tienen bien desarro.lada la giba facial.

Scylaticus Nitidigaster (Macquart) no ha podido ser reconocido entre el

material estudiado. Considerando que se le describe con la cuarta celda pos-

terior cerrada, debe por lo tanto pertenecer a otro género.

CLAVE. PARA LAS ESPECIES CHILENAS DE SCYLATICUS

Ie : Mystax-ocupa la mitad o más de la cara nicas 2

) p

e Mystax -reducido-a: unas pocas fijas de pelos en el borde oral - 4

2(D). Tibias y la mayoría de los fémures rojos ........ S. chilensis (Macq.)

2 WFibias. y fémures en su mayoría EgTrOS: c.cctat creian tenian 3

(23. Alas hyalinas; abdomen gris, fuertemente CÓNICO coommccnionicono.

: A lo A et S. cuneigaster- n. sp.

ae Alas:con ei tercio basal café oscuro, por lo menos en el área

costal; abdomen corrientemente cilíndrico, negro, con

bandas blancas en los tergites 2-5 .............. S. lugens (Phil)

4(1>). Mystax de 1-2 filas de pelos cerdosos, ralos, negros, en -el

a A A S. rufipes (Phil.)

cae Mystax de cerca de 4 filas de pelos apretados en el borde

oral, blancos en el centro, negros en los costados ..........

e A EN O e O S. venustus (Phil.)

Scylaticus chilensis (Macquart)

(Fig. 148, 152, 154, 155, 465)

Dasypogon chilensis Macquart, 1850, p. 68, Chile; Blanchard, 1852, p. 367,

Santa Rosa; Stuardo, 1946, p. 84; Hull, 1962, p. 228.

Dasypogon tricolor Philippi, 1865, p. 688, Colchagua; Bigot, 1878, p. 221, Chile.

Scylaticus tricolor (Philippi). Stuardo, 1946, p. 81; Hull, 1962, p. 145.

TYPO. GZ, no visto, en Museum National d'Histoire Naturelle, Paris,

France. Typo de D. tricolor Phil., en coll. J. T. M., Museo Nacional de H'storia

Natural, Santiago, Chile (visto).

DIAGNOSIS. Una especie negra con antenas, patas, callos humerales y

callos posteriores rojos; abdomen con una banda blanca en el borde pos-

terior de los tergites 2-5; genitalia del macho roja o negra; alas hyalinas,

café en la base del área costal.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara cubierta de densa micropubes-

cencia plateada, excepto en la línea bajo las antenas y sobre la giba facial,

donde la micropubescencia es más dispersa y difícilmente reconoscib'e; frente

en su mayor parte negra, con micropubescencia plateada dispersa presente

principalmente a lo largo de los bordes, cerca de las antenas; pelos frontales

blancos; ocellarium negro, ocelos negros; cerdas ocelares biancas y finas. Cabeza

en vista lateral: giba facial luce gris oscura; mystax de pelos gruesos, blancos,

dispersos; antenas (Fig. 148) roja, primero y segundo segmentos con pelos

blancos, tercer segmento ligeramente oscuro cerca del ápice, con un micro-

segmento rojo que lleva una espina dorsal cerca de la punta; barba escasa,

blanca; pelos occipitales blancos, proclinados; área postocular con pelos blan-

cos, una línea de pelos blancos cortos y gruesos a lo largo del borde posterior

de los ojos; proboscis negra bri:lante, rojiza cerca del ápice, unos pocos pelos

largos blancos, d'spersos en el borde basoventral, pelos cortos y amarillos en

el ápice; palpos maxilares negros, pelos blancos. Protórax negro brillante con

pelos blancos largos, más abundantes en los costados, collar con abundantes

cerdas gruesas blancas y finos pelos. Pleura toráccica negra brillante con finos

pelos bancos dispersos y una línea de micropubescencia en el borde dorsal

de la mesopleura y en los bordes lateroposteriores del metepisternum; una

pequeña mancha de micropubescncia plateada en la pteropleura y en la hypo-

pleura; cerdas mesepimerales largas, blancas. Mesonotum rojizo, en vista dorsal

parece rodeado por una línea brillante de m'icropubescencia plateada, inte-

rrumpida en la notopleura y algunas veces en los callos humerales; callos hu-

merales y posteriores rojos, cubiertos de micropubescencia dorada y plateada,

principalmente en el área dorsal; líneas centrales y manchas laterales negras,

líneas centrales fusionadas formando una ancha banda la cual aparece casi

— 172 —

fusionada a las manchas laterales; espacios no cubiertos por las líneas cen-

trales mi por las manchas laterales, rojizos, con micropubescencia plateada

dispersa; disco del scutellum negro con micropubescencia plateada; mesonotum,

callos humerales y callos posteriores con pelos finos blancos dispersos, cortos,

los cuales son más largos y cerdosos en el centro y en el tercio poterior del

mesonotum; 2 largas cerdas notopleurales amar'llas; 6-8 cerdas intraalares

amarillas; 4-6 cerdas postalares blancas, 4 gruesas, el resto finas; 3 pares de

cerdas scutelares blancas. Costados del postmesonotum negros con micropubes-

cencia plateada. Alas (Fig. 154) hyalinas, ligeramente cafés en el área costal,

venas en el área costal café claro, otras venas café oscuro. Coxas y trocánteres

negros con unas pocas áreas de micropubescencia plateada y largos pe-os

blancos, los cuales son más abundantes en el lado anterior de las coxas me-

dianas y frontales; fémures rojizos, negros en la base; tibias y tarsos rojizos;

patas cubiertas de pelos cortos, la mayoría deprimidos, finos y blancos, unos

pocos son más largos en el lado ventral de los fémures; cerdas b:ancas; uñas

negras, el cuarto basal rojizo. Abdomen gradualmente atenuado hacia el ápice,

negro brillante, cubierto de pelos cortos, blancos, deprimidos, más o menos

dispersos, los pelos son más largos en los costados de los tergites primero y

segundo; un grupo de 6-8 cerdas finas y blancas en cada costado del primer

tergite; tergites 2-5 con una línea blanca en el borde posterior; stern'tes ne-

gros con pelos blancos. Genitalia (Fig. 155) rojiza, hypandrium corto, más bien

rectangular, oscuro a lo largo de los bordes, con abundantes pelos café oscuros

en el borde distal; epandria termina en una piaca delgada doblada ventral-

mente; gonopodos globosos, con dos procesos distales y un afilado gancho

que se proyecta más allá del proceso y se curva ventralmente; funda del pene

simple, sin procesos apicales distales (Fig. 152).

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor con espinas negras en los

acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 14.0 -20.0 mm, promedio 16.2 mm; largo de ala

10.5 - 12.2 mm, promedio 11.3 mm; ancho de ala 3.1 - 3.8 mm, promedio 3.3 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 17% y 169. COQUIMBO: 4 12 Co-

quimbo, Nov. 2-3, 1961, L. E. Peña (INCO); 19 Cuesta del Almendro, Vi-

cuña-Hurtado, Oct. 13, 1940, E. P. Reed (CAS); 17 El Pangue, Oct. 30, 1936,

E. P. Reed (CAS); 19 Estero Cane:a, Pto. Oscuro, Oct. 24, 1961, L. E. Peña

(OTT); 1g 19 El Pangue, Vicuña, Coquimbo, Nov. 3-4, 1961, L. E. Peña

(OTT); 192 El Pangue, Coquimbo, Oct. 27, 1961, L. E. Peña (INCO); 192

Los Molles, Ovalle, Nov. 8-11, 1961, L. E. Peña (OTT); 192 Tongoy, coast

of Coquimbo, Oct. 27, 1961, L. E. Peña (INCO); 13 Rivadavia, Coquimbo,

950 m., Oct. 29, 1957, L. E. Peña (INCO); 1 9 Socos, Coquimbo, Oct. 15, 1957,

Es Peña (INCO);. 1.5: Bda. Illapel, Coquimbo, 600 m., Nov. 1-6, 1954,

—173-—

L. E. Peña (INCO). O'HIGGINS: 17 “Las Cuevas, Nov., 1947, L. E. Peña

(INCO); 1g Las Nieves,” Cord'llera Rengo, Nov. 12-26, 1947, L. E. Peña

(INCO); 13 El Peumo, Nov., 1949 (MNHN); 13 Pangal, Ene. 3, 1964, Toro

(CEE). SANTIAGO: 1¿G Colina, 1898 (FTM); 17 49 Aculeo, Santiago,

Nov. 3-7, 1959, L. E. Peña (INCO); 2 2 Nos. 16 y 17, El Canelo, Dic. 27,-1936,

F. Ruiz (INCO); 13 Peñalo:én, Ene. 27, 1953 (MNHN). Localidad incierta:

1 2 Los Chinches, Oct. 17, 1937, E. P. Reed (CAS). Sin localidad ni fecha: 13

[typo de D. tricolor Ph Lippi] (JM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA: Ilustrada en Fig. 465.

DISCUSION. Los machos de Santiago y O'H 'ggins tienen la genitalia ne-

gra y los tres últimos tergites con pelos negros; esta coloración es también la

dei especimen typo de D. tricolor Phil. Los machos de Coquimbo tienen la

genitalía rojiza y todos los pelos de los tergites blancos. La descripción de

Macquart de D. chilensis y la de Philippi para D. tricolor fio indican el color

de la genitalia de los machos y su vestidura. Las estructuras internas de las

genitalias rojas y de las negras no presentan diferencias substanciales.

“Scylaticus cuneigaster n. sp.

(Figs. 150, 153, 156, 429)

- TYPO. ¿ de Quebrada Algodones, Carrizal Bajo, Atacama, 18 de Octu-

bre, 1957, L. E. Peña; este ejemplar está depositado en el Departamento de

Zoo ogía de la Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Ciaramente distinto de otras especies chilenas del género,

especialmente por su color gris uniforme y por la ausencia de las líneas blancas

en los tergites; mystax blanco; antenas negras; cerdas y pe:os del cuerpo, patas

y cabeza, blancos; a.as hyalinas; abdomen de los machos fuertemente atenuado,

genitalia pequeña. . >

DESCRIPCIÓN DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara cubierta

de densa micropubescencia plateada, la cual es más dispersa sobre la giba fa-

cial; frente negra con micropubescencia pleateada dispersa, luciendo grisácea,

pelos frontales blancos; oce-larium con la misma vestidura de la frente, ocelos

b:anquecinos; cerdas ocelares blancas. Cabeza en vista lateral: g ba facial baja

pero definida, ocupa la mitad basal de la cara, cuúb'erta por micropubescencia

de aspecto grisáceo; mystax de gruesos pelos setiformes blancos; antenas (Fig.

150) negra con micropubescencia rala, luciendo gris en parte; primer segmento

con varios pelos blancos, princ'paimente en la parte basal; segundo segmento

con 1-2 pelos blancos en la parte basal; tercero, ligeramente más largó -que

e. doble de los dos primeros segmentos cembinados, «con un corto microseg-

NED

mento en el áp'ce; microsegmento con una corta espina negra en el ápice;

birba de abundantes pelos blancos; pelos y cerdas occipitales blancas; área

postocuiar con micropubescencia plateada dispersa y finos pelos blancos tam-

bién dispersos; probosc's negra brillante con pelos finos y largos en la mitad

basoventral y pelos cortos bancos en el ápice; palpos maxilares negros, primer

segmento con finos pelos blancos, segundo segmento con gruesos pelos negros.

Protórax luce gris con finos pelos dispersos; lóbulo protorácico con abundante

pelo fino blanco de aspecto lanoso; cerdas del collar blancas, entremezcladas

con pelos largos, finos y blancos. Pleura toráccica negra, uniformemente cu-

bierta de micropubescencia plateada, la cual es ligeramente dorada en el dorso

de la mesop:eura, a lo largo de los bordes; unos pocos pelos finos sobre los

sc:erites, un bien definido grupo de finos pelos blancos en la parte dorsal

de la sternopleura; cerdas mesepimerales blancas. Mesonotum negro, líneas

centrales y manchas laterales poco definidas, evidentemente debido a la. pre-

sencia de micropubescencia presente en las «áreas que las rodean; cal:os hu-

merales rojizos; callos poster ores negros con micropubescencia plateada; ves-

tidura del mesonotum de diminutos pelos blancos ralos, 2 mechones de largos

pelos blancos en la parte central del área postsutural del mesonotum; disco del

scutellum negro con micropubescencia plateada y unos pocos pelos blancos; 6

cerdas dorsocentrales blancas; 3 gruesas cerdas notopleurales blancas más la

2 cerdas más cortas; 4-5 cerdas intraalares blancas; 6 cerdas postaiares blancas;

6 pares de cerdas scutelares blancas. Costados del postmesonotum negros con

micropubescencia dorada y plateada. Alas hyalinas, venas café oscuras. Coxas

negras con micropubescencia plateada y pelos bancos, los cuales son más

abundantes en las coxas medianas y frontales; fémures negros con pelos cortos

blancos, unos pocos pelos más largos en el lado ventral, cerdas blancas; tibias

medianas y frontales café claras en la mitad basal, cub'ertas de pelos blancos,

cerdas bancas; tibias posteriores negras con cerdas y vestidura semejante;

tarsos café oscuros a negros con pelos y cerdas blancas, los pelos. son cortos.

Uñas negras, tercio basal rojizo. Abdomen cuneiforme, negro, de apariencia

gris, uniformemente cubierto de micropubescencia blanca y pelos cortos blancos

y deprimidos; primer tergite abdominal con 6 - 7 gruesas cerdas biancas en cada

lado. Cenitalia pequeña, epandria negros, gonopodos café rojizo oscuros, hypan-

drium pegueño; genitalia cubierta de peos blancos, más largos que los de los

tergites (Figs. 153, 156).

HEMBRA. Semejante al macho, espinas del ovipositor negras.

El nombre cuneigaster se refiere al aspecto cuneiforme del abdomen.

MEDIDAS. Largo total 12.5-18.2 mm [typo 18.5 mm]; largo del ala

8.0 - 11.0 mm |typo 11.0 mm]; ancho del ala 2.0 - 3.2 [typo 3.2 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 3% y 19. ATACAMA: 13 [typo] Que-

brada Algodones, Carr.zal Bajo, Oct. 18, 1967. L. E. Peña (INCO); 17 Alga-

115

rrobo, Atacama, Sept. 17, 1957 (INCO); 1% Monte Amargo, Sept. 17, 1965,

Zapata (CEE); 19 Las Juntas, Sept. 17, 1965. Etcheverry (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. llustrada en Fig. 429.

DISCUSION. Los 4 ejemplares estudiados son similares, excepto por los

ocelos que son caté, las cerdas notop/eurales, intraalares y postalares que son

amarillas y la genitalia que es negra en los ejemplares paratypos.

Scylaticus lugens (Philippi) n. comb.

(Fig 149/0157, ADO 490)

TYPO: perdido. Un neotypo es designado como un f de Granizo, Val-

paraíso, Nov. 24, 1967. G. Venegas; este especimen está depositado en el De-

partamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro, antenas en su mayoría oscuras, cerdas común-

mente blancas, mystax blanco; tergites 2-6 con una línea bianca en el borde

posterior; alas en su mayor parte café, más oscuras en la mitad basal y en las

áreas costales.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (G). Cabeza en vista frontal: cara ne-

gra con micropubescencia plateada a lo largo de los bordes de los ojos, áreas

centrales desnudas; frente negra, pelos frontales blancos; oce:larium negro,

ocelos oscuros; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral: giba facial ne-

gra con micropubescencia plateada rala; mystx blanco; antenas (Fig. 149) en su

mayor parte negras con algunas áreas rojizas, una gran área rojiza en el lado

externo del tercer segmento; primer y segundo segmentos con pelos negros y

blancos ralos; tercer segmento con un microsegmento corto, cilíndrico, oscuro,

con una corta espina en el ápice; barba blanca; pelos occipitales y cerdas del

occipucio, blancas, continuadas en una línea a lo largo de los bordes de los

ojos; covertura del área postocular de pelos finos, blancos y dispersos; ¡pro-

boscis negra brillante con algunas pequeñas áreas rojizas, mitad basoventral

con largos pelos blancos dispersos, pelos cortos amarillos en el ápice; palpos

maxilares negros, primer segmento con pelos blancos, segundo segmento con

pelos negros más largos y más gruesos. Protórax negro; pronotum y collar con

pelos blancos; cerdas del collar negras; unas pocas cerdas blancas en los costa-

dos del pronotum; abundantes pelos gruesos, setiformes, en las propleuras;

lóbulo protoráccico con abundantes pelos finos y negros entremezclados con

unos pocos pelos blancos. Pleuras toráccicas negras, con una gruesa línea de

micropubescencia plateada en el margen dorsal de la mesopleura; una mancha

redonda de micropubescencia plateada en el margen posterior de la sterno-

pleura y en el borde posterior del metepisternum; cerdas mesepimerales

— 176 —

blancas. Mesonotum negro; callos humerales y posteriores, scutellum y áreas

entre las líneas centrales y las manchas laterales, con micropubescencia pla-

teada; líneas centrales fusionadas en una sola banda negra; manchas laterales

y líneas centrales conectadas; covertura del notum de pelos gruesos, cortos,

negros y dispersos, pelos más largos y café en el área posterior-central del

mesonotum; callos humerales con pelos y cerdas blancas; 4-5 cerdas dorso-

centrales blancas ubicadas detrás de la sutura transversa; 3 cerdas notop“eurales

blancas; 6 cerdas intraalares blancas, entremezcladas con unos pocos pelos

setiformes café; 7 cerdas postalares blancas entremezcladas con unos pocos

pelos setiformes café oscuros; 3 pares de cerdas scutelares blancas. Costados del

postmesonotum negros, cubiertos con micropubescencia plateada. Alas café,

con reflejos azulados en la mitad basal y en el borde costal, mitad apical

hyalina, venas café oscuras. Coxas negras con pelos blancos, los cuales son

más abundantes en el lado anterior de las coxas medianas y frontales; fémures,

tibias y tarsos negros, con fimos pelos blancos, cortos, dispersos, cerdas en su

mayoría blancas, algunas cerdas café oscuras en las tibias anteriores y en los

tarsos; articulaciones entre los fémures y las tibias, roj'zas. Uñas negras, cuarto

basal rojizo. Abdomen negro; tergites cubiertos de cortos pelos blancos y

negros entremezclados, deprimidos, los pelos blancos son más abundantes en

el dorso; tergites 2-6 con una línea bianca en el borde posterior, en los

tergites 2-3 y 6, la línea está casi interrumpida en el área dorsocentral;

costados del primero y segundo tergite con gruesos pelos setiformes, la ma-

yoría de ellos blancos en el primer tergite y café oscuro en el segundo tergite;

sternites megros con pelos negros y blancos, los cuales son más largos que los

pelos de los tergites, los pelos blancos son más abundantes a lo largo de la

línea central. Genitalia (Fig. 158) negra, pelos en su mayoría negros, pelos

cortos amarillos en la mitad apical del dorso de los apandria; epandria ter-

minan en una angosta placa dobiada ventralmente; hypandrium con abun-

dantes pelos en el borde distal; funda del pene simple, sin procesos apicales

(rg: 1D7).

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor negro brillante con pelos

cortos, finos y amarillos, espinas negras en los acanthophorites.

MEDIDAS. Largo total 15.1 - 17.2 mm., promed'o 16.0 mm. [neotypo 15.1

mm.]; largo de alas 11.3-11.5 mm., promedio 11.4 mm. [neotypo 11.5 mm.];

ancho del ala 3.7 - 3.8 mm., promedio 3.7 mm. [neotypo 3.7 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 43 y 12. SANTIAGO: 19 Ei Canelo,

San Alfonso, Nov. 18, 1959, T. Ramírez (INCO); 1 (gen. prep.) El Peumo,

Río Maipo, Nov., L. E. Peña (INCO). TALCA: 17 22 mi. N. de Talca,

Dic. 22, 1950, R. £ M. (INCO). Localidad incierta: 1 Caleu, Ene. 4, 1964,

L. E. Peña (INCO). Sin localidad ni fecha: 13 E. P. Reed (CAS). VALPA-

RAISO: 13 [neotypo] Granizo, Valparaíso, Nov. 24, 1967, G. Venegas.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Mlustrada en Fig. 450.

DISCUSION. Hay variaciones en el color de algunos pelos y cerdas; los

pelos frontales, occipitales, ocelares, de la barba y de la proboscis y además

algunas cerdas, varían del blanco al negro; la línea blanca en el borde pos-

terior del terg:te 6 está ausente en tres de los cinco ejemplares estudiados.

Scylaticus rufipes (Philippi) n. comb.

(Figs. 159, 161-163, 451)

Dasypogon rufipes (Philippi, 1865, p. 691; Stuardo, 1946, p. 82; Hull, 1962,

p. 228.

Scylaticus philipú Schiner, 1868, p. 163, Chile; Stuardo, 1946, p. 81; Hull,

1962 p: 1945:

Scylaticus rubripes Bigot, 1878, p. 435; Stuardo, 1946, p. 81; Hull, 1962, p. 145.

TYPO: perdido. Se designa un neotypo como una Q de Estero La Jaula,

Curicó, Chile, Ene., 1964, L. E. Peña; este especimen está depositado en el

Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile. Los typos (1 Z,

19) de S. philippa Schiner están en el Naturhistorisches Museum, Wienne,

Austria (vistos); los typos (1%, 19) de $. rubripes Bigot están en el Hope

Department of Entomology, Oxford University, England (vistos).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; patas rojas, base de los fémures, trocánteres

y coxas negras; mystax negro, reducido al margen oral; antenas rojas; meso-

notum negro con bandas plateadas en los costados y en el borde frontal; dis-

co del scutellum plateado; alas rojizas, más intenso en el área costal; tergites

uniformemente negros brillantes; cerdas de las patas rojas.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (9). Cabeza en vista frontal: cara uni-

formemente cubierta de densa micropubescencia blanca; frente negra con cer-

das negras; ocellarium negro, ocelos café; cerdas ocelares negras. Cabeza en

vista lateral (Fig. 159): cara plana, inclinada, luce en partes, de acuerdo a

la dirección de la luz; mystax reducido a 2 filas de cerdas negras en el borde

oral, no hay cerdas en los costados del borde oral; antenas rojas, primer y

segundo segmento con pelos negros, tercer segmento con un microsegmento

rojo, corto, que lleva una pequeña espina en el ápice; barba de pelos largos

negros, dispersos; pelos y cerdas occipitales y del área postocular, negras; pro-

boscis negra brillante, con largos pelos dispersos, negros, en la mitad baso-

ventral, pelos cortos y amarillos en el ápice; palpos maxilares negros con

abundantes pelos negros y gruesos. Protórax negro, pelos y cerdas del collar,

negras, 2 manchas de densa micropubescencia amarilla en el lado dorsal, co-

— 178 —

nectadas con las bandas plateadas del mesonotum. Pleuras toráccicas negras,

unos pocos pelos negros en los scleritos; cerdas mesepimerales negras, meso-

notum negro, sin líneas centrales ni manchas laterales discernibles, una banda

de densa micropubescencia plateada-amarillenta a lo largo de los costados, sobre

y alrededor de los callos humerales, conectada frontalmente con las dos manchas

del pronotum; callos posteriores negros; scutellum uniformemente cubiertos por

densa micropubescencia plateada amarillenta; mesonotum cubierto de pelos

finos, cortos, dispersos; cerdas dorsocentrales mo discernibles; 3 cerdas noto-

pleurales negras; 1 cerda intraalar negra; 3 cerdas postalares negras; 5 pares

de fimas cerdas scutelares negras. Costados del postmesonotum negros, con

micropubescencia plateada. Alas hyalinas, café rojizas en el área costal, venas

café rojizas cerda del área costal, el resto café oscuras. Coxas, trocánteres y

base de los fémures negros; coxas con pelos negros los cuales son más abun-

dantes en el lado anterior de las coxas medianas y frontales; fémures con pelos

y cerdas negras en la parte basal, pelos blancos y cerdas rojas en la mitad

basal; tibias y tarsos rojos con pelos cortos, blanquecinos, dispersos, las cerdas

son rojo brillantes, estos elementos son má abundantes en las tibias medianas.

Uñas negras, cuarto basal rojo. Abdomen atenuado, negro brillante; tergites

con unos pocos pelos cortos o negros, los pelos son más largos y más abundantes

a lo largo de los costados; primer tergite con un mechón de pelos negros en

cada costado; esternites negros brillantes con largos pelos negros y algunos

pelos blancos entremezclados. Ovipositor truncado, espinas en los acantho-

phorites café.

MACHO. Semejante a la hembra; genitalia (Figs. 161-163) rotada en

909; epandria anchos, curvados ventralmente en el borde distal; gonopodos

globosos, más cortos que los epandria; hypandrium corto, globoso, subtrian-

gular, terminando en un corto proceso distal; funda del pene con 2 largos

procesos apicales.

MEDIDAS. Largo total 13.1 -18.3 mm, promedio 15.0 mm [neotypo 16.5

mm]; largo del ala 11.1-13.4 mm, promedio 12.3 mm [neotypo 13.4 mm];

ancho del ala 3,2-3.8 mm, promedio 3.5 mm [neotypo 3.8 mm].

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 49. ACONCAGUA: 12 Río Blanco,

Aconcagua, Dic. 5-8, 1964, L. E. Peña (INCO). CURICO: 19 [neotypo] Es-

tero la Jaula, Curicó, Ene., 1964, L. E. Peña (INCO). VALPARAISO: 1gG 12

Valparaíso, Novara, [cotypos de S. philippi Sch.] (WIEN). Sin localidad ni fe-

cha: 13 19 N0 353, Bigot Coll. [cotypos de S. rubripes Bigot] (OXF).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 451.

DISCUSION. Esta especie presenta algumas variaciones. La frente y el

área postocular están densamente cubiertas de micropubescencia plateada en

— 179 —

algunos ejemplares y desnudas en otros: algunos ejemplares más viejos y en-

erasados, presentan el disco del scutellum negro, mientras que otros lo pre-

sentan plateado debido a la vestidura; las cerdas dorsocentrales (corrientemente

4 finas cerdas negras) están ausentes en el neotypo, pero están presentes en

los otros ejemplares, ubicadas detrás de la sutura transversa; en el neotypo,

la banda plateada de los costados del mesonotum mantiene casi el mismo ancho,

en tres ejemplares sin embargo, 2% y 19, la banda se expande frente a los

callos humerales, alcanzando los bordes de las líneas centrales, las cuales en

esos ejemplares son claramente discernibles en la parte anterior del meso-

notum; esta característica la poseen los cotypos de S. philippi; en dos especi-

menes la banda no es discernib!e.

Seylaticus venustus (Phil*ppi)

(Fig. 151, 160, 164, 427)

Dasypogon venustus Philippi, 1865, p. 689, posiblemente cerca de Santiago.

Scylaticus venustus (Phiippi). Bigot, 1878, p. 22; Hull, 1962p. 1145;

TYPO. Perdido. Un neotypo es designado como un f de El Canelo,

Santiago, Nov. - Dic., 1952. Ramírez; este espécimen está depositado en el De-

partamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro, patas rojas, corrientemente con grandes áreas

negras en los fémures medianos y posteriores; mystax reducido a una serie

de densas filas de pelos en el borde oral, blancos en el centro y negros en

los costados; mesonotum rodeado de una línea blanca en los bordes laterales

y el borde frontal; disco del scutellum blanco; abdomen de la hembra con

una línea blanca en los bordes posteriores de los tergites 2-4; machos con

una línea blanca en los tergites 2 - 5; antenas rojas; alas ligeramente cafés en

el área costal, café oscuras en el centro y hyalinas en el borde posterior.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (G). Cabeza en vista frontal; cara cu-

bierta por densa micropubescencia amarilienta; frente negra, pelos frontales

negros; ocellarium negro, ocelos café rojizos; cerdas ocezares negras. Cabeza

en vista lateral (Fig. 151); cara plana, ligeramente producida en el borde oral,

con 4 - 5 filas de densos pelos, blancos en el área central. negros en los costados;

antenas rojas, primeros y segundos segmentos con pelos negros, segundo seg-

mento con unas pocas cerdas biancas en el lado ventral, cerca del ápice;

tercer segmento rojo, con un corto microsegmento rojo que lleva una corta

espina en el ápice; pelos occip'tales, vestidura postocular y barba, negra;

con pelos negros y largos en la mitad basoventral, pelos cortos blancos en el

ápice; palpos maxilares café oscuros con gruesos pelos negros. Protórax negro

— 180 —

con pelos negros, cerdas del collar negras; 2 manchas de micropubescencia

plateada en el dorso, luciendo como una prolongación de las líneas blancas del

mesonotum. Pleura toráccica negra, con pequeñas manchas y líneas de micro-

pubescencia café dorada y unos pocos pelos negros dispersos; cerdas mesepi-

merales negras con unos pocos pelos blancos entremezclados. Mesonotum ne-

gro, sin líneas centrales ni manchas latera:es discernbles, cubierto por cortos

pelos negros dispersos, una banda de micropubescencia blanca a lo largo de

los costados y sobre los callos humerales; disco del scutellum cubierto de mi-

cropubescencia blanca; callos posteriores negros; cerdas dorsocentrales no de-

finidas; 3 cerdas notopleurales blancas; 2 cerdas intraalares blancas; 3 cerdas

postalares blancas; 4-6 pares de finas cerdas scutelares negras. Costados del

postmesonotum negros con micropubescencia café dorada. Alas café claras a

lo largo del área costal y en las celdas basales; café oscuro en las celdas d:'scal,

marginal y submarginal, en la parte posterior hyalinas. Coxas y trocánteres

negros, coxas anteriores y medianas con gruesos pelos negros; coxas poste-

riores principalmente con finos pelos blancos; fémures, tibias y tarsos rojos,

lado dorsal de los tarsos ligeramente oscuro; patas cubiertas de pelos cortos,

blancos y amarillos, dispersos, cerdas rojo brillantes. Abdomen negro; tergites

cub'ertos de pezos negros, cortos y deprimidos, borde posterior de los tergites

2-5 con una línea blanca de micropubescencia; sternites con pelos largos

negros; 5 cerdas blancas en cada lado del primer tergite. Genitalia (Fig. 164)

rotada en 909, negra, con abundantes pe-os negros; epandria globosos, anchos;

gonopodos cortos, globosos; hypandrium globoso, triangular; funda del pene

con 2 largos procesos apicales (Fig. 160).

HEMBRA. Semejante al macho, pero con líneas biancas en el borde

posterior de los tergites 2-4 solamente; ovipositor truncado, corrientemente

telescopeado, esp:mas de los acanthophorites rojo oscuras.

MEDIDAS. Largo total 15.3 - 18.0 mm, promed'o 15.6 mm [neotypo 16.2

mm); largo de ala 11.8-13.0 mm, promedio 12.4 mm [neotypo 12.5 mm];

ancho de ala 3.0-4.9 mm, promedio 3.9 mm [neotypo 3.6 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 71% y 8%. COQUIMBO: 1¿£ Pto. Oscuro,

coast of Coquimbo, Oct. 23-26, 1961, L. E. Peña (OTT); 1g 30 km. S. of

Combarbaiá, Nov. 30, 1950, R. £ M (CAS); 13% Los Maitenes, 1200 - 1400 m.,

Coquimbo, Oct. 15-17, 1954, L. E. Peña (BRAS). SANTIAGO: 1¿£ [neotypo]

El Canelo, Santiago, Nov. - Dic. 1952, Ramírez (INCO); 29 El Canelo, San-

tiago, M. Etcheverry (CEE, INCO); 13 El Canelo, Santiago, Nov. - Dic., 1954,

L. E. Peña (BRAS); 29 El C.arillo, 800 - 1500 m., Nov. 19, 1953, L. E. Peña

(BRAS, INCO); 192 San Ramón, Nov., L. E. Peña (INCO); 19 Santiago

(JTM); 19 N0 7674, Santiago, Puelma (BERL). VALPARAISO: 17 (gen.

prep.) Limache, Dic. 9, A. Faz (INCO); 137 Valparaíso, A. Faz (USNM).

Localidad incierta. 192 Candelaria (JIM).

— 181 —

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 427.

DISCUSION. En esta especie varía el color de las patas; algunos ejempla-

res, incluido el neotypo, tienen las patas casi totalmente rojas, mientras que

otros ejemplares tienen áreas negras, principalmente en los fémures medianos

y en las patas posteriores; algunos ejemplares presentan los fémures medianos

y poster“ores negros en la mitad basal, la base de las tibias y tarsos posteriores

en estos ejemplares también es negra; otros individuos presentan áreas oscuras

de diversas formas y tamaño en varias áreas de las patas.

THEROMYIA Williston

Cylindrophora Philippi, 1865, p. 704 (preocupado en Coleoptera, 1851).

Lynchia Williston, 1889, p. 225 (preocupado en Diptera), 1882).

Myiothera Williston, 1889, p. 259 (preocupado en Aves, 1811).

Theromyia Williston, 1891, p. 73; Hull, 1962, p. 260.

TYPO DEL GENERO: Cylindrophora murina Philippi, 1865, por monotipía.

Cabeza en vista frontal dos- quintos más ancha que alta; vertex ligera-

mente hundido; oceliarium bajo pero grande, ocelos grandes. Cabeza en vista

lateral: área postocular un - cuarto del ancho de los ojos; cara plana, sin giba

facial. Antenas con el tercer segmento antenal atenuado, más angosto que los

segmentos precedentes, con un microsegmento esférico excavado en su parte

inferior, el microsegmento posee un stylo atenuado de cerca de un - tercio del

largo del tercer segmento, con una corta espina en el ápice; mystax compuesto

de dos mechones circulares de peios ubicados uno al lado del otro, los pelos

dirigidos hacia abajo, ambos mechones nacen de cerca del borde oral. Meso-

notum con varias manchas de diferentes colores o de color uniforme; meso-

notum cubierto de pelos cortos, dispersos, los cuales son más largos y setiformes

en la parte posterior; cerdas dorsocentrales bien definidas detrás de la sutura

transversa. Scutellum con unos pocos pelos débiles, de mediano tamaño o sin

pelos; 4-6 pares de gruesas cerdas scutelares. Costados del postmesonotum

con micropubesencia, sin pelos. Celda marginal abierta; cuarta celda posterior

apenas abierta en el borde; R, alcanza el borde del ala antes del ápice; R,

termina detrás del ápice del ala; celda anal ligeramente abierta o cerrada en

el margen del ala; M, y m forman un ángulo de 1450, Tibia frontal con

espina; pulvilos de un- cuarto del largo de las uñas. Abdomen fuertemnte

atenuado, corto, los últimos 3 segmentos corrientemente telescopeados en los

machos. Alas ligeramente más largas que el abdomen. Genitalia de los machos

muy grande, alargada dorsoventralmente; hypandrium grande, globoso, elevado

dorsalmente; epandrium pequeño, dividido en 2 esclerites platiformes, alar-

gados, dirigidos ventralmente, formando casi un ángulo recto con el abdomen;

epiprocto armado de 2 procesos agudos; gonmopodos grandes, g:obosos, que

dejan la genitalia abierta posteriormente. Genitalia de las hembras fuertemente

atenuada y truncada; 4 pares de espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical, 3 especies; 2 en Chile.

El género Theromyta puede ser fácilmente separado de Aphamartania

Shiner por el reducido pulvilo, el cual en Aphamartania está normalmente

desarrollado y corrientemente alcanza el extremo de las uñas.

Tres especies han sido descritas en este género o en el “grupo Aphamar-

tania murina”: murima Philippi, calopyga Schiner y nana Pritchard. Las es-

pecies chilenas murina y calopyga son sinónimas; nana es de Perú y una nueva

especie pegnal es presentada en este trabajo.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE THEROMYIA

1. Fémures anteriores sin cerdas en la región dorsoapical

A A O T. nana (Pritchard)

ig Fémures anteriores con 2-4 cerdas amarillas en la región

TN E e oe e e e al ME ER pac 2

2d Machos con 4-6 cerdas agudas, bien destacadas, comprimidas,

de color negro, en la parte anterodistal de las tibias

posteriores (Fig. 186); fémures posteriores con un des-

tacado mechón de pe.os en la parte basoventral

ES cs. too Ea ARCA a T. murnmna (Philippi)

eS Machos sin las típicas cerdas descritas anteriormente; parte

ventral de los fémures con pelos distribuidos más o me-

nos uniornemente (Ei 19) it T. pegna: n. sp.

Las hembras de murina y pegnai no pueden ser separadas en base a la

morfología externa; el material estudiado fue separado de acuerdo a las eti-

quetas de colección de los machos.

— 183 —

Theromyia murina (Philippi)

(Figs. 184 - 191, 462)

Cylindrophora murina Philippi, 1865, p. 704, Santiago.

Lynchia murima (Philippi). Willston, 1889, p. 255.

Myothera murina (Phi.ippi). Williston, 1889, p. 259.

Theromyia murima (Philippi). Williston, 1891, p. 73; Carrera, 1949, p.. 130;

fig. 98, -135- 136; 1953, p. 276; Hull; 1962, p. 202, Lis. 170 1142100

1874 y 1908; Martin, 1968, p. 89.

Aphamartania murina (Philippi). Kertesz, 1909, p. 144; Bromley, 1932, p. 266;

Pritchard, 1941, p. 135, fig. 3, Santiago, Angol, Valparaíso; Stuardo,

IA pp: 89:

Cylindrophora calopyga Schiner, 1868, p. 166, Chile.

Theromyia calopyga (Schiner). Williston, 1891, p. 73.

Aphamartania calopyga (Schiner). Kertesz, 1909, p. 144.

TYPO. Perdido. Un neotypo se designa en este trabajo: un f de Alga-

rrobo, Valparaíso, Marzo 26, 1945, L. E. Peña. El typo de C. calopyga está

posiblemente perdido, no se encuentra ni en el Naturhistorisches Museum,

Wien, Austria ni en el Zoologisches Museum, Humboldt Universitat, Berlin,

Alemania, donde la mayoría del material de Schiner ha sido depositado.

DIAGNOSIS. Especie gruesa, corta, de color café, de tamaño variable;

fémures negros, tibias y tarsos café rojizos; mystax blanco; genitalia de los

machos grande, rotada en 1800; hypandrium globoso, e:evado dorsalmente,

el borde posterior con un proceso redondeado en el centro (Fig. 190); epandria

dirigidos hacia abajo (Fig. 187). Machos con 4-6 gruesas cerdas negras en

la parte anterodistal de las tibias posteriores (Fig. 186). Hembras sin estas

cerdas en las tibias posteriores, en los fémures posteriores, los pelos de la

parte ventral están más o menos uniformemente distribuidos.

DESCRIPCIÓN DEL NEOTYPO (G). Cabeza en vista frontal: (Fig. 188),

cara, frente y ocellarium, cubiertos por densa micropubescencia blanca; ocelos

globosos, café oscuros; cerdas oce.ares blancas; mystax blanco, cabeza en vista

lateral: antenas negras, primer segmento negro brillante con pelos blancos,

segundo segmento con micropubescencia bianca y pelos blancos, tercer seg-

mento más o menos cilíndrico, con micropubescencia corta, blanca dispersa,

ligeramente atenuada en el extremo; microsegmento pequeño, ventralmente

atenuado con un stylo cónico de cerca de un - tercio del largo del tercer seg-

mento, con una corta y gruesa espina en el ápice (Fig. 185); barba blanca, corta,

de color y longitud semejante a la de los pesos occipitales y postoculares;

pesos occipitales más gruesos, sin cerdas occipitales discernibles; proboscis corta,

negra brillante, con pezos blancos finos dispersos en la parte basoventral, y

— 184 —

pelos cortos blancos en el ápice; palpos maxilares negros con pelos blancos

y finos, dispersos. Protórax negro, con micropubescencia blanca dispersa y

abundantes pelos amarillos; sin cerdas discernibles en el collar. Pleura to-

ráccica negra brillante con micropubescencia plateada y dorada cubriendo

la mayor parte de los pleurites; finos pelos blancos en el borde posterior de

las mesopleuras; unos pocos pelos blancos finos en los otros pieur'tes; cerdas

mesepimerales largas, amarillentas. Mesonotum café oscuro, cubierto de micro-

pubescencia dorada a lo largo de los costados, micropubescencia plateada en

el centro; líneas centrales y manchas laterales dejan ver el color del dorsum;

pelos cortos y blancos dispersos sobre el mesonotum, más abundantes entre

los callos humerales y la notop-eura; callos humerales cubiertos de micropu-

bescencia amarilienta pero desde una vista lateral lucen rojizos; disco del

scutellum café oscuro, con micropubescencia blanca y dorada, d'spersa, una

corta línea dorada en el centro; 2-3 cerdas dorsocentrales amarillas en la

parte posterior del mesonotum; 5-7 cerdas notopleurales amarillas; 5 cerdas

intraalares amarillas; 3 cerdas postalares amarillas; 6 pares de cerdas scutellares

amarilas. Costados del postmesonotum café oscuros. Alas hyalinas, venas café;

una mancha café en r—m, Cu, y en la bifurcación M. Coxas negras brillantes

con micropubescencia blanca, dispersa y pelos blancos; fémures negros, con

pelos blancos cortos, dispersos; fémures frontales con 3 cerdas amarillas en

la parte dorsocentral; fémures poster'ores con un mechón de largos pelos

blanquecinos en la parte basal; tibias café rojizas, más oscuras ventralmente,

cubierta de pelos cortos ralos y blancos, cerdas amarillas; tibias poster/ores

(Fig. 186) con una fila de 4 gruesas cerdas agudas, comprimidas, negras ubicadas

al costado de la mitad distal; fémures posteriores con pelos concentrados en el

tercio basoventral; tarsos roj zos, con fimos pelos blancos dispersos, los cuales

son más abundantes en el dorso, cerdas del dorso y de los costados blancas,

en la parte ventral son negras. Uñas largas, suavemente curvadas, negras, mitad

basal rojiza, pulvilos diminutos, un- cuarto del largo de la uña. Abdomen

corto, grueso, con 5 segmentos bien definidos, segmento 6-8 teiescopeados

bajo el segmento 5; tergites 1 y 2 negros, 3-5 café oscuros con pelos blancos

en los costados, en su mayor parte cerca del margen anterior; en los tergites

l, 2 y 5, los pelos son más largos y más abundantes; sternites café oscuros,

más rojizos hacia el ápice, con finos pelos blancos dispersos, los cuales son

más abundantes en el sternite 5. Genitalia grande, rojiza, rotada 1800; hy-

pandrium grande, globoso, café claro, eievado dorsalmente, borde posterior

con una proyección redondeada en el medio (Figs. 187, 190); epandria sepa-

rados, dirigidos ventralmente; gonopodos globosos, dististylus dirigido hacia

adentro y bifurcado en el extremo; funda del pene con 2 grandes procesos

laterales, doblado en un ángulo de 909, ápice de la funda del pene no dentada

(Figs. 184, 189); pelos de la genitalia amarilios.

— 185 —

HEMBRA. Semejante al macho; abdomen atenuado; ovipositor (Fig.

191) con espinas café en los acanthophorites; sin notables cerdas en forma dé

espinas en las tibias posteriores; pelos de la porción ventral de los fémures

posteriores, distribuidos más o menos uniformemente.

MEDIDAS. Largo total 9.1-17.0 mm, promedio 11.5 mm [neotypo 12.0

mm]; largo de ala 6.7 - 10.8 mm, promedio 8.0 mm [neotypo 9.2 mm]; ancho

de ala 2.1 -3.2 mm, promedio 2.5 mm [neotypo 2.8 mm].

MATERIAL EXAMINADO. 603 y 7119. ACONCAGUA: 19 Los Ma-

quis, Quilimarí, Mar. 11, 1964, L. E. Peña (INCO). ARAUCO: 1gG Alto

Nahuelbuta, 1400 m., Ene. 16, 1954 (OOT); 17 19 Butamalal, 1100 - 1400 m.,

Cord Nahuelbuta, Ene. 23-31, 1954, L. E. Peña (INCO); 23 Contulmo,

Feb. 4, 1904, Schonemann S. (BERL); 3gZ 62 Contulmo, Feb. 11, 1962,

g 329 Peillem - Pilli, 600 - 800 m., Herrera (1% 29 INCO, 27 49 CEE); 4

Cord, Nabuelbuta, Ene. 13, 1954, E: E. Peña (93-19 INCO> 20 SONO

53 109 Pichinahuel, 1100-1400 m., Cord. Nahuelbuta, Ene. 13, 1954, L. E.

Peña (39.12 OTE, 2% 32 INCO); 2 PillimePill,. Arauco, Ene

1954, L. E. Peña (MNHN, INCO). BIO-BIO: 3Z 69 El Abanico, Bío-Bío,

Dic. 30, 1950, R. £ M. (2 22 INCO, 1 49 CAS); 30. Mulchén; bellas

vista, E. P. Reed (CAS)); 17 N9 26, 19 NO 27 Mulchén, Ene., 1926, F. Ruiz

(INCO); CAUTIN: 19 20 km. E. de Temuco, Ene. 7,1951, —K. £-ME(CAS)

1g 39 Viillarica, Feb. 30, 1963, Fetis (INCO). CONCEPCION: 3gZ 22

Concepción, 1903,..E...P..Reed (23 "19 CAS IF 19 INCO) AL Coneeps

ción, Feb. 11, 1962, Mendez (INCO); 1% Copiulemu, Feb. 30, 1964, Artigas

(INCO). COQUIMBO: 1 ¿ Cerrillos Pobres, March 7, 1956, L. E. Peña (BRAS);

13 Cuésta Buenos Aires, 38 km. N. La Serena, Mar. 17, 1958, Wagenk.

(INCO); 292 Hda. Illapel, 600 m., Coquimbo, Nov. 1-6, 1954, L. E. Peña

(INCO); 49 35 mi. S. de Ovalle, Dic. 1, 1950, M. £ R. (1 INCO), 3 CAS);

13 Variante Diaguitas, Feb. 24, 1941 (MNHN). CURICO: 19 Estero La

Jaula, Los Queñes, Curicó, Ene. 4-18, 1966 (INCO). LINARES: 19 Bu,

llileo, Feb. 3, 1957, A. Montero (CEE); 17 Bader von Longaví, Parral, Scho-

nemann (BERL). MALLECO: 13% Angol, Nov. 31, 1954, B. Carvallo (INCO);

19 AAngol, Ene., 1954, L. E. Peña (BRAS); 1 19 N9 381 Angol, Dic. 27,

1929 (USNM); 13 Jauja, Feb. 11, 1962, Charlin (INCO); 1gZ W. of Angol,

Sierra de Nahuelbuta, 1200 m., Ene. 3, 1951, M. £ R. (CAS). MAULE: 19

Pelluhue, Maule, Dic. 2, 1953, L. E. Peña (INCO). (NÑUBLE: 12 Laguna

Laja, 1420 m., Feb., 1956, L. E. Peña (INCO); 12 Las Cabras, 1480 m., Ene.

16-29, 1955. L. EsgPeña (BRAS); 1 Las Trancas, Gord: Nuble Ene 17523;

1953, L. E. Peña (INCO). SANTIAGO: 12 Talagante, Feb., 1960, J. Herrera

(INCO); 19 Santiago, Puelma (BERL). VALPARAISO: 1gZ [neotypo] 192

Algarrobo, Valparaíso, Mar. 26, 1945, L. E. Peña (INCO); 1% Curacaví,

Mar. 10, 1951, Instituto Pedagógico (CEE); 12 La Campana, Quillota, Mar.

— 186 —

3,1951, J. Herrera (CEE); 15 Laguna Verde, Mar. 1927, Dr. Reed (CAS);

13 192 Olmué, Mar. 23, 1920, P. Herbst (INCO); 23 49 Quilpué, Mar,,

2D Reed, (237 119 INGO, 3.9. CAS); :LG*, Quillota; Mar. 23, 1951,-J:

Herrera (CEE); IZ Quinteros, Feb., 1957, Etcheverry (CEE); 13 Valparaíso,

Dr. Reed (USNM); 13 Valparaíso, 1947 (BERL); 19 Valparaíso, Mar. 22,

1911, P. Herbst (CAS); 1S 19 Valparaíso, Dr. Reed (CAS); 1 39 Val-

paraíso, Mar. 1927, Dr. Reed (19 INCO, 17 29 CAS); 17 Viña, Mar. 1927,

Dr. Reed (INCO). Localidad incierta: 19 La Rosa, Mar. 15, 1954, L. E. Peña

(BRAS). Sin localidad ni fecha: 1% 19 Chile (CAS); 1 19 Chile, 1922,

A. Faz (USMN); 23 19 (JIM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 462.

DISCUSION. Esta especie presenta notables variaciones en tamaño y co-

lor. Ejemplares de Colchagua y otras provincias nortinas son en general más

grandes; de los 47 individuos estudiados, solo 1 es pequeño, de tamaño se-

mejante a los individuos de Malleco a Cautín. Una serie de 9 ejemplares de

El Abanico, Bío-Bío, son los más pequeños entre el material estudiado. Los

individuos más grandes lucen más opacos y grisáceos que los pequeños, los

cuales corrientemente son brillantes, especialmente sobre el abdomen. Otras

características como el color de los fémures y de las tibias, cubierta del ab-

domen, color de los tergites, color de la genitalia de los machos, manchas me-

sonotales, vestidura del notum y de las pleuras torácicas, presentan variacio-

nes de color que van desde el negro hasta el rojizo, pero en su mayoría son

variaciones sobre el café; la cubierta pilosa varía algunas veces en densidad

y también en longitud.

El abdomen de los machos se presenta corrientemente telescopeado, el

tergite 5 o 6 parecen ser los últimos, pero después de aclarar_el abdomen, se

encuentran los segmentos 6-8, los que muestran una importante reducción

de tamaño.

Entre el material de PIM Coll., 2 especímenes tienen etiquetas manus-

critas de Philippi: 13 “Dasypogon ? acanthocnemis Ph.” y una Y “Dasypogon ?

n. genus? apiformis”, estos son nomina nuda.

PRESAS. Hym. Apis mellifera; Bradynobaenus gayt.

Theromyia pegnat n. sp.

(Figs. 192-196, 443)

TYPO. ¿, de Lolol, Colchagua, Marzo 30, 1955, L. E. Peña; este ejemplar

está depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad de Con-

cepción, Chile.

— 187 —

DIAGNOSIS. Próximo a T. murina, de la cual los machos pueden se-

pararse por la ausencia de bien definidas cerdas espinosas en las tibias pos-

teriores; cuerpo corto, grueso, café oscuro; fémures negros, tibias y tarsos en

su mayoría amarillentos; mystax blanco; genitalia del macho grande, rotada

en 1809; hypandrium grande, dorsalmente elevado, borde posterior con un

proceso rectangular en el centro (Fig. 192); epandria dirigido ventralmente,

y a menudo ligeramente hacia adelante; ápice de la funda del pene dentada

en los bordes (Fig. 194, 195).

DESCRIPCION DEL TYPO (¿). Cabeza en vista frontal; cara y frente

cubierta por densa micropubescencia plateada; pelos frontales amaril.os; oce-

llarium cubierto de micropubescencia plateada dispersa; ocelos rojizos; cerdas

ocelares blancas; mystax blanco. Cabeza en vista lateral: antenas negras, primer

segmento negro briilante con pelos blancos, segundo segmento con micropu-

bescencia blanca d'spersa y pezos blancos; tercer segmento más bien cónico,

con micropubescencia bianca dispersa, microsegmento cónico con una cerda

gruesa en el ápice; barba de finos pelos blancos dispersos; pelos postoculares

largos, amarillentos; pelos occipitales amarillentos, cerdas occipitales mo dis-

cernibles; proboscis corta, negra briilante, con largos pelos fimos blancos en

la parte basoventral y cortos pelos amarillos en el ápice. Protorax negro, cu-

bierto de micropubescencia blanca y abundantes pelos largos, finos y blancos;

cerdas del collar indistintas. Pleuras toráccicas negras, con áreas de micro-

pubescencia dorada o plateada y unos pocos pelos blancos fimos, los cuales

son más abundantes en el borde posterior de la mesopleura; cerdas mese-

pimerales amarillas. Mesonotum café, con m'cropubescencia dorada en el cen-

tro y micropubescencia plateada en los costados y en el borde posterior; líneas

centrales y manchas laterales, café; manchas laterales forman 3 bandas anchas

alineadas; vestidura mesonotal de cortos pelos blancos dispersos, más o menos

uniformemente distribuidos sobre el dorso; callos humerales cubiertos de mi-

cropubescencia plateada, desde una vista lateral lucen rojizos; callos poste-

riores negros, cub'ertos de micropubescencia plateada; scutellum café oscuro

con micropubescencia plateada y dorada; 4 cerdas dorsocentrales café, ubi-

cadas detrás de la sutura transversa; 4-6 cerdas notop-eurales café; 3 cerdas

intraalares café, una localizada aparte, más hacia el dorso; 3 cerdas postalares

amarillas; 5 pares de cerdas scutelares amarillas. Costados del postmesonotum

negros con micropubescencia plateada dispersa. Alas (Fig. 196) hyalinas, venas

café, una mancha café en r—m, en la bifurcación de R 4+ 5 y en la base de

R 4 + 5Coxas trocánteres y fémures negros, con peos blancos dispersos, más

abundantes y largos en las coxas y en el lado ventral de los fémures, cerdas

amar-llas; fémures anteriores con 3 cerdas amarillas en el lado dorsal cerca del

ápice; fémures posteriores con pelos uniformemente distribuidos en el lado

ventral (Fig. 193); tibias amarilas en el lado anterior, café rojiza en el lado

— 188 —

ventral y negra apicalmente, cubierta de pelos blancos dispersos y cerdas tam-

bién blancas; tarsos café rojizos, más oscuros en el dorso, con pelos cortos,

dispersos blancos, cerdas blancas, cerdas del lado ventral en su mayoría café.

Uñas suavemente curvadas, negras, el quinto basal rojizo; pulvilos diminutos,

de un - cuarto del largo de las uñas. Abdomen café rojizo, primeros dos tergites

negros; tergites con grandes áreas cubiertas con micropubescencia plateada,

pelos en los costados amarillos, la pilosidad es más abundante y se extiende

más dorsalmente en los tergites 1, 6 y 7; sternites café oscuros con pelos lar-

gos, amarillos dispersos. Genitalia café con pelos amarillos; hypandrium grande,

elevado dorsalmente, borde posterior con un proceso rectangular en el medio

(Fig. 192); epandria dirigida ventralmente; gonopodos globosos, con el dis-

tistylus bifurcado en el ápice y doblado hacia adentro; funda del pene con

los bordes apicales dentados (Fig. 194, 195).

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor con espinas rojizas en los

acanthophorites.

Esta especie es dedicada a L. E. Peña, el entomólogo chileno que ha co-

lectado la mayor parte del material estudiado en el presente trabajo.

MEDIDAS. Largo total 9.5 - 14.2 mm, promedio 11.5 mm [typo 10.5 mm];

largo de ala 7.1-10.5 mm, promedio 9.5 mm [typo 8.0 mm]; ancho de ala

2.1 -3.5 mm, promedio 2.8 mm [typo 2.1 mm).

MATERIAL EXAMINADO. 8Z y 59. COLCHAGUA: 4gG [typo] 42

Lolol, Colchagua, Feb. 30, 1955 (23 392 INCO, 23 19 BRAS). SANTIAGO:

IZ 19 Santiago, Puelma (INCO); 17 Pudahuel. Oct., 1952 (MA). Localidad

incierta: 1% Las Breas, Mar. 24, 1951, E. P. Reed (INCO). Sim localidad ni

fecha: 1 Chile, E. P. Reed (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Mlustrada en Fig. 443.

DISCUSION. El color de los pelos de la cabeza varía desde el blanco

hasta el café amariliento; las manchas cafés están pobremente desarrolladas

en algunos especímenes, en otros están ausentes; el color de las tibias es a

veces uniformemente café rojizo. No se han podido separar las hembras de esta

especie de las hembras de T. murina. Las hembras en el material examinado

fueron colectadas junto con los machos. Los machos de murina y pegnat pueden

ser separados por sus genitalias, como se muestra en las Figs. 187, 189, 190,

ALO y LODO:

La incierta localidad Las Breas, obtenida del material examinado, puede

corresponder al norte de Coquimbo, lo que daría a esta especie uma distri-

bución bastante extendida hacia el norte.

— 189 —

18.

20.

Pritchardia hirt:pes,

12. A:

12 o

12 A

12% A de

12 e

Cerco

dististylus

epandrium

gonopodo

hypandrium

funda del pene

octavo sternite

noveno tergite

surstylus

ala.

funda del pene en vista lateral.

genitalia (después de aclarada), vista dorsal;

pelos omitidos.

ovipositor (después de aclarado), en vista dorsal;

pe:os omitidos.

ovipositor (después de aclarado, en vista lateral,

extendido.

huevo.

24. Pritchardia tertialis, genitalia Y en vista lateral.

O ” ——, funda del pene en vista lateral.

20 UB, ” —, ovipositor (después de aclarado), en vista dorsal;

pelos omitidos.

PA ” —, ovipositor (después de aclarado), en vista lateral;

pelos omitidos.

28. Obelophorus terebratus, ala.

ep epandrium

gp gonopodo

— 192 —

Obelophorus terebratus, cabeza en vista lateral.

O. Fé

O. ES

O AS

Or sá

Hexameritia micans,

cerco

dististylus

epandrium

gonopodo

hypandrium

quinto tergite

séptimo tergite

octavo tergite

noveno tergite

genitalia Y en vista lateral.

genitalia SY (después de aclarada), en vista

dorsal; pelos omitidos.

funda del pene en vista lateral.

ovipositor en vista dorsal.

cabeza en vista lateral.

— 194 —

40.

41.

dist

Hexameritia micans,

”

cerco

dististylus

epandrium

gonopodo

hypandrium

funda del pene

placa subanal

octavo tergite

surstylus

noveno sternite

séptimo tergite

octavo tergite

noveno tergite

ala.

genitalia Y (después de aclarada), en vista dorsal.

genitalia G (después de aclarada), en vista lateral,

extendida.

extremo del abdomen (GS y 2) en vista dorsal.

genitalia G (después de aclarado), vista ventral;

pelos omitidos.

ovipositor en vista ventral, extendido.

ovipositor telescopeado.

— 196 —

43.

46.

47.

48.

Alyssomyia brevicornis, cabeza en vista lateral.

Á. 7 , genitalia Y en vista lateral.

A. % , ovipositor (después de aclarado), en vista ventral;

pelos omitidos.

Alyssomyia bulbosa, genitalia Y en vista lateral.

Al: pe , funda del pene en vista lateral.

A. ” —, ovipositor (después de aclarado), en vista ventral;

pelos omitidos.

A. alar

cerco

apodema eyaculador

poro eyaculador

epandrium

hypandrium

octavo sternite

séptimo tergite

50.

Alyssomyia pampina, antena.

Creolestes rubricornis, genitalia S en vista lateral.

Creolestes rufescens, genitalia Y en vista lateral.

Ex s , cabeza en vista lateral.

E S , Ovipositor en vista lateral.

epandrium

gonopodo

hypandrium

octavo tergite

=2001E

Ñ AUN

DIN

GOO

ANA

, 4

Y, Y)

lmm

NS É. S

S S AS, sen

== ==

De.

DD:

56.

60.

Creolestes nigribarbis, cabeza en vista lateral.

C: á , hypandrium en vista dorsal.

C. A , fémur posterior; pelos omitidos.

C. SS , genitalia Y en vista lateral.

Creolestes keissert, fémur posterior; pelos omitidos.

Creolestes nigribarbis, ala.

E: de , Ovipositor en vista dorsal.

epandrium

fémur posterior

gonopodo

hypandrium

séptimo tergite

— 202 —

63.

64.

65.

66.

67.

Creolestes parvum, hypandrium en vista dorsal.

Creolestes nigribarbis, uñas tarsales.

Dasypecus heteroneurus, cabeza en vista lateral.

D. > , cabeza en vista frontal.

Graptostylus dolosus, cabeza en vista lateral.

Dasypecus heteroneurus, ala.

Graptostylus dolosus, genitalia Y en vista lateral.

celda discal

epandrium

gonopodo

hypandrium

primera vena mediana

cuarta celda posterior

séptimo tergite

octavo tergite

— 204 —

ali UM) E Ñ

| Vb Ñ

Ú l AN a RN

68.

69.

76.

4th P

Graptostylus dolosus, tibia y tarsos medianos; pelos omitidos.

G. ca caba:

Dasycyrton arrayanensis, cabeza en vista lateral.

Graptostylus dolosus, tarso posterior; pelos omitidos.

Dasycyrton tener, genitalia Y en vista dorsal.

D. ” , genitalia Y en vista dorsal.

Graptostylus dolosus, antena.

Dasycyrton tener, tarso posterior.

JD) a ula

cerco

dististylus

epandium

fémur mediano

gonopodo

hypandrium

celda marginal

octavo sternite

cuarta celda posterior

tarso posterior

tibia mediana

octavo tergite

— 206 —

Dasycyrton minusculus, antena.

1D).

1D)

coquimbensis, antena.

lanosus, antena.

sucinopedis, antena.

papaverol, antena.

gibbosus, antena.

arrayanensis, antena.

tener, antena.

notocinereatus, antena.

medinae, antena.

Hypenetes asiliformis, cabeza en vista lateral.

ll.

”

, genitalia Y en vista lateral.

, ápice del epandrium en vista dorsal.

, funda del pene en vista dorsal.

, funda del pene en vista lateral.

cerco

apodema eyaculador

ducto eyaculador

poro eyaculador

epandrium

gonopodo

hypandrium

funda del pene

— 208 —

A >

83 / 84 |

| e 8 B

: E

== EA Le” Y

FN NÓ SN)

5 x

ejP ejd

92. Hypenetes critest, S, genitalia en vista lateral.

OIE ” —, ápice del hypandrium en vista dorsal.

94. H. davidson:, funda del pene en vista lateral.

95. H. critesi, funda del pene en vista lateral.

OE: davidsoni, funda del pene en vista dorsal.

Qui MIEL: critesi, funda del pene en vista dorsal.

98. H. davidsoni, ápice del hypandrium en vista dorsal.

eE e ” —, g, genitalia en vista lateral.

Cc cerco

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

tg, séptimo tergite

— 210 —

100. Hypenetes digitatus, funda del pene en vista lateral.

VOM: HE 005 cabeza en vista lateral.

102. EL fucosus, ápice del hypandrium.

EI digitatus, genitalia Y en vista lateral.

NOE PUEL: ” ——, ápice del hypandrium en vista dorsal.

(UTE: ” —, funda del pene en vista dorsal.

106. H. fucosus, genitalia Z en vista lateral.

gp gonopodo

hyp hypandrium

e Ms

Ml 7%]

al Ñ

UN.

Jl IN

0.5m

107.

108.

109.

110.

111.

114:

d pr

ejp

hyp

Hypenetes fucosus, funda del pene en vista lateral.

¡El

magellanicus, genitalia Y en vista lateral.

jucosus, funda del pene en vista dorsal.

magellanicus, ápice del hypandrium en vista dorsal.

, funda del pene en vista lateral.

: , funda del pene en vista dorsal.

punctipennis, genitalia Y en vista lateral.

”

, ápice del hypandrium en vista dorsal,

procezo dorsal de la funda del pene

poro eyaculador

hypandrium

ATA

15,

116.

113.

120.

121:

Hypenetes shineri, cabeza en vista lateral.

del

punctipennis, funda del pene en vista dorsal.

y , funda del pene en vista lateral.

schinert, ala.

, funda del pene en vista dorsal.

, ápice del hypandrium en vista dorsal.

genitalia Z en vista lateral.

cerco

gonopodo

hypandrium

quinta vena radial

— 216 —

122. Hypenetes schiner:, funda del pene en vista lateral.

ZO El: ” —, ovipositor (después de aclarado) en vista ventral;

pelos omitidos.

124, Hypenetes valentinez, funda del pene en vista dorsal.

AE schinert, ovipositor en vista lateral.

LORA TET valentine?, funda del pene en vista lateral.

27. El. pi , ápice del hypandrium en vista dorsal.

128. Leptochelina jaujensis, cabeza en vista lateral.

129. Hypenetes valentinez, genitalia J en vista lateral.

act acanthophorites

c cerco

ep epandrium

gp yonopodo

hyp hypandrium

sta octavo sternite

tg, octavo tergite

— 218 —

130. Leptochelina jaujensis, ala.

la e .l Ss:

131b. £. ” ——, genitalia Y en vista lateral.

o E 4 antena:

133. Oberon fulvicornis, cabeza en vista lateral.

134. 50 ás , genitalia Y en vista lateral.

135.0: fulvipes, genitalia Z (después de aclarada), en vista lateral,

extendida.

ISCIMO: ” , Ovipositor en vista dorsal.

USO AMC:

1387, O: fulvicornis, funda del pene en vista lateral.

(E Cerco

cl uña

emp empodium

ep epandrium

dist dististylus

gp gonopodo

hyp hypandrium

psh funda del pene

pul pulvilo

tg, séptimo tergite

tg, octavo tergite

Oberon fulvipes, ala.

O. = , ápice de la tibia anterior con espina.

O. ” —, funda del pene en vista lateral.

Prolepsis quadrinotata, fémur mediano.

A e , cabeza en vista lateral.

de dl , ápice del tercer segmento antenal.

12% E o ¿MEL

12 , genitalia Y en vista ventral.

Ve E , genitalia Y en vista lateral.

cerco

dististylus

epandrium

fémur mediano

espina de la tibia anterior

gonopodo

hypandrium

funda del pene

séptimo sternite

surstylus

tarso anterior

tibia anterior

sexto tergite

séptimo tergite

ia ÉS.

AT IS

145

lmin

148. Scylaticus chilensis, antena.

EAS: lugens, antena.

IDO =S: cunelgaster, antena.

MAMAS venustus, antena.

ML e chilensis, funda del pene en vista lateral.

IS: cuneigaster, genitalia Y en vista lateral.

154. $. chilensis, ala.

DS: ” —, genitalia Y en vista lateral.

DOS: cuneigaster, genitalia Y en vista dorsal.

C CErcO

dist dististylus

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

stn; sexto sternite

tg, séptimo tergite

tg, octavo tergite

sur surstylus

E o

0.5mm

las 0.5mm

152

HS Ap

153

157. Scylaticus lugens, funda del pene en vista lateral.

IN ” , genitalia J en vista lateral.

DOS: rufipes, cabeza en vista lateral.

160. $. venustus, funda del pene en vista lateral.

161, *S. rufipes, gen italia Y (después de aclarada) en vista ventral,

pelos omitidos.

162.8: ” , genitalia Y en vista dorsal.

1163.0-S: ” —, genitalia S en vista lateral.

Cc cerco

dist dististylus

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

psh tunda del pene

stn, séptimo sternite

stna octavo sternite

tg, séptimo tergite

tg. octavo tergíte

— 9296 —

164. Seylaticus venustus, genitalia S en vista lateral.

165. Araiopogon gayi, genitalia Z (después de aclarada) en vista dorsal, pelos

omitidos.

1667 4: fraternus, funda del pene en vista lateral.

107 4: ” —, cabeza en vista lateral.

168. A. se , Cyanogaster, cabeza en vista lateral.

169: 4: de , £ay2, funda del pene en vista lateral.

C cerco

dist dististylus

ep epandrium

Sp gonopodo

hyp hypandrium

tg, octavo tergite

170.

ATL:

173

Oct

tg.

Araiopogon cyanogaster, tunda del pene en vista lateral.

A. e , genitalia Y en vista dorsal.

vale gay?, ala.

Deromyia fuscipennis, $, vista lateral.

1! de os ala

Cerco

epandrium

gonopodo

octavo tergite

2805

Deromyta fuscipennas,

10%

1D):

nigriventris,

genitalia Y en vista lateral.

funda del pene en vista lateral.

S', antena.

02, antena.

genitalia Y en vista lateral.

funda del pene en vista lateral.

Saropogon n:igronasutus, genitalia Z en vista dorsal.

”

cerco

dististylus

epandrium

gonopodo

hypandrium

sexto tergite

octavo tergite

, Cabeza en vista lateral; tercer segmento antenal

incompleto.

NS)

187.

188.

Saropogon nigronasutus, ala.

Theromyia murina, ápice de la funda del pene en vista dorsal.

)

, antena.

, gd, pata posterior.

, genitalia Y en vista lateral.

cabeza en vista lateral.

, funda del pene en vista lateral.

celda anal

Cerco

dististylus

poro eyaculador

epandrium

fémur posterior

gonopodo

hypandrium

funda del pene

sexto tergite

190.

OTE

192.

193:

194.

act

Theromyia murina, genitalia Z en vista ventral.

Tia ” —, ovipositor (después de aclarado) en vista ventral.

Ti. pegnai, ápice del hypandrium en vista ventral.

YE ” , g, pata posterior.

Ti ” —, funda del pene en vista lateral.

ale ” , ápice de la funda del pene en vista dorsal.

Pe alas

celda anal

acanthophorites

Cerco

dististylus

poro eyaculador

epandrium

émur posterior

gonopodo

hypandrium

funda del pene

piaca subanal

octavo sternite

octavo tergite

Á ES WWA

> Oia

195

E 196

SUBFAMILIA LAPHRIINAE

Las especies chilenas de Lahpr'inae se pueden reconocer por la siguiente

combinación de caracteres: celdas marginal y cuarta posterior cerradas; tercer seg-

mento antenal con una pequeña hendidura en el ápice, en cuyo centro existe

una pequeña espina, sin microsegmento ni stylo; palpos de dos segmentos; epan-

drium e hypandrium no fusionados; ovipositor sin espinas en los acanthophorites;

sin espina en las tibias anteriores.

La subfamilia está representada por 2 géneros y 3 especies.

ANDRENOSOMA Rondani

Andrenosoma Rondani, 1856, p. 160; Hull, 1962, p. 349; Martin, 1966, p. 323.

Elaetoma Costa, 1863, p. 49.

TYPO DEL GENERO: AÁsilus atra Linné, 1758, por designación original.

Cabeza en vista frontal dos veces más ancha que alta; vertex fuertemente

hundido; ocellarium bajo; ocelos pequeños. Cabeza en vista lateral: áreas posto-

culares de la mitad del ancho del ojo; giba facial redondeada, fuertemente produ-

cida, ocupando la mitad de la cara; palpos deprimidos en los tres - cuartos apicales;

antenas largas, grandes; tercer segmento antenal oval, pedunculado, sin microseg-

mento; mystx formado por largas cerdas gruesas distribuidas por sobre toda la

giba facial. Sin manchas mesonotales; vestidura del mesonotum, de pelos de ta-

maño mediano, corrientemente más largos en la parte posterior; scutellum con

pelos semejantes a los de la vestidura mesonotal; 4-6 pares de cerdas escutelares,

corrientemente dirig'das hacia arriba. Costados del postmesonotum sin pelos. Cel-

da marginal cerrada y pedicelada; cuarta celda posterior cerrada y pedicelada;

R, termina antes del ápice del ala y R, después del ápice del ala; celda anal

cerrada con un corto pedicelo; M, y m forman un ángulo de 900 a 11009.

Espina de las tibias frontales ausente. Abdomen deprimido, ancho, más ancho en

el centro, ligeramente atenuado hacia atrás. Alas más largas que el abdomen. Ge-

nitalla del macho pequeña, rotada aproximadamente en 909; hypndrium dimi-

nuto (Fig. 201); epandrium no completamente dividido; gonopodos prominentes,

más largos que el epandrium y con distintos procesos en el ápice. Genitalia de

la hembra pequeña, tergite 8 en forma de cono, sin espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION. Neéartica, Neotropical, Paleartica, Ethiopica, Oriental,

Australiana, 43 especies; 1 especie en Chile, Andrenosoma rufiventris (Blanchard).

Este género es próximo a Laphria Meigen del cual puede ser separado por

la forma foliforme del palpo maxilar, el cual es cilindrico en Laphria. En la es-

pecie chilena rufiventris el palpo maxilar tiene un segmento bien definido y es-

— 238 —

te es foliforme; Hull (1962: 349) indica dos segmentos palpales para este género,

así también se ha indicado en la diagnosis de la subfamilia en este trabajo, sin

embargo esta situación no es clara en lo referente a la especie chilena.

Martin (1966: 324) reconoce Pogonosoma Rondani y Pilica Curran como sub-

géneros de Andrenosoma.

Andrenosoma rufiventris (Blanchard)

(Figs. 197 - 202, 466)

Laphria rufiventris Blanchard, 1864, p. 364, Pl. 1, fig. 5, Concepción; Philippi,

1865, p. 684.

Andrenosoma rufiventris (Blanchard). Schiner, 1868, p. 176; Bromley, 1932, p.

268; Stuardo, 1946, p. 84; Hull, 1962, p. 350.

Laphria calogastra Philippi, 1865, p. 684; Hull, 1962, p. 323.

Nusa calogastra (Philippi). Hermann, 1912, p. 262.

Andrenosoma calogastra (Philippi). Bromley, 1932, p. 268; Stuardo, 1946, p. 83.

TYPO: Z¿,en Museum National d'Histoire Naturelle, Paris, Francia (no vis-

to). Typo de L£. calogastra, perdido.

Diagnosis. Cabeza, torax, fémures y primer segmento abdominal negros, el

resto de los segmentos abdominales y a menudo la parte basal de las tibias, ro-

jizo; alas en su mayoría fumosas; tercer segmento antenal claviforme; giba facial

fuertemente producida, mystax negro; proboscis deprimida; una línea blanca en

el borde de los ojos, excepto en la parte dorsal.

MACHO. (Descripción basada mayormente en un f comparado con el typo

por L. Tsacas en 1966). Cabeza en vista frontal: cara y frente negra brillante

con micropubescencia plateada dispersa y poco destacada; pelos frontales negros;

ocellarium negro, ocelos café claros; cerdas ocelares negras, 2 cerdas largas y grue-

sas en el centro; una línea blanca en el borde de los ojos, excepto en la parte dor-

sal. Cabeza en vista lateral (Fig. 198): mystax de abundantes cerdas gruesas, co-

rrientemente negras, el resto de la cara cubierta de una vestidura semejante pero

más corta; antenas negras, primro y segundo segmentos con pelos negros, más

abundantes y gruesos en el primer segmento; tercer segmento con una cavidad

en el lado externo y que se extiende a lo largo de un - tercio de la mitad apical;

barba de abundantes pelos largos, negros o blancos, algunas veces negros y blan-

cos entremezclados; área postocular negra brillante, cubierta con finos pelos ne-

gros; cerdas occipitales gruesas, negras, ordenadas en una sola fila, corrientemen-

te 7-12 detrás de cada ojo; proboscis deprimida, aguda, más gruesa hacia la base,

con pelos blancos o negros en el lado ventral, y pelos cortos, finos, amarillos en

el ápice; palpos maxilares con pelos negros. Pleura toráccica negra brillante con

— 239 —

m'cropubescencia plateada poco destacada y pelos finos negros dispersos, seme-

jantes a los pelos del protórax, pero siempre más largos que los pelos del meso-

notum; cerdas mesepimerales abundantes, largas, negras. Protórax negro brillan-

te con micropubescencia p:ateada poco destacada, más notable desde una vista

dorsal, con largos finos pelos negros dispersos, los cuales son ligeramente más

densos en los lóbulos protoráccicos y en el collar; cerdas del collar negras, entre-

mezcladas con abundantes pe os negros finos. Mesonotum negro, con algo de mi-

crop. bescencia plateada, poco destacada, en los bordes y detrás de los callos pos-

teriores, vestidura mesonotal negra; vestidura del scutellum negra; cerdas dorso-

centrales no diferenciadas; 3 cerdas notopleurales negras, 2 más delgadas; 4-6

cerdas intraalares negras; 6 cerdas postalares negras, 2 más delgadas; 6-8 pares

de largas cerdas escuteliares negras. Costados del postmesonotum negros brillantes,

pobremente cubiertos de micropubescencia plateada. Alas (Fig. 199) en su ma-

yor parte ahumadas, algunas veces café, más oscuras a lo largo de las venas;

tercio basal corrientemente más claro, algunas veces casi hyalino. Coxas, trocán-

teres, fémures y tarsos negros, con abundantes pelos blancos y negros entremez-

clados; unas pocas cerdas cortas negras en el ápice de los fémures y abundantes

cerdas gruesas negras en los tarsos; tibias de color variable, desde uniformemen-

te negras hasta los tres - cuartos basales rojizos y el ápice negro; vetidura de

las tibias semejante a la de los fémures; tibías anteriores con unas pocas cerdas

negras en el ápice; tibias posteriores y medianas con largas cerdas finas y negras,

especialmente a lo largo del borde posterior; tibias posteriores claramente curva-

das. Uñas negras. Primer segmento abdominal negro brillante con reflejos azula-

dos, cubierto de dim nutos pelos negros en el dorso y largos pelos en los costados

y en los sternites; 2 cerdas negras en cada lado del primer segmento; segmentos

2-8 rojizos, cubiertos con cortos pelos rojos en el dorso, más largos y más den-

sos en los sternites; 2 cerdas rojizas en los costados de los tergites 2 - 4, corriente-

mente poco destacadas en el tergite 4. Genitalia rojiza, pequeña, rotada en 909

a menudo ventralmente curvada (Figs. 197, 201); hypandrium oculta bajo el

sternite 8 (Fig. 201); epandria más cortos que los gonopodos, funda del pene se-

gún ilustración en Fig. 200.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor agudo, formado por el tergite y el

sternite 9, el segmento 8 forma la base del ovipositor (Fig. 202).

MEDIDAS. Largo total 15.5 -24.1 mm., promedio 17.2 mm.; largo de ala 10.8-

17.8 mm., promedio 14.2 mm.; ancho de ala 2.8 - 4.8 mm., promedio 4.5 mm.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Según ilustración en Fig. 466.

MATERIAL EXAMINADO. 213 y 199%. ACONCAGUA: 19 Valle de los

Piuquenes, Aconcagua, Feb. 7-12, 1964, Peña (OTT). BIO BIO: 1gG Bio Bio,

1928, E. P. Reed (USNM); 23 NO 6 y NO 7 Mulchén, Ene. 1928, F. Ru'z (USNM);

19 5 km. W. of Tucapel, Bio Bio, Dic. 28, 1950, R £ M. (Cas). COQUIMBO:

UA =

19 Cuesta Cavilolén, llapel, Coquimbo, Oct. 28, 1958, L. E. Peña (INCO);

19 Hda. Illapel, Coquimbo, 600 - 1000 m., Nov. 1-6, 1954, L. E. Peña (1INCO);

1 Hda. Illapel, Coquimbo, 600 - 1000 m., Oct. 24-25, 1954, L. E. Peña (BRAS);

13 Mlapel, Coquimbo, Nov. 21-22, 1961, Peña (INCO); 1 (gen. prep.) 4 mi.

S. Vicuña, Coquimbo, Dic. 3, 1950, R. £ M. (INCO); 13% (gen. prep). 20 mi.

E. of La Serena, Coquimbo, Dic. 5, 1950 (INCO); 19 10 mi. W. of Vicuña, Dic.

3, 1950, R. £ M. (CAS). LINARES: 17 19 Estero Leiva, Cordillera Parral,

Ene. 8-12, 1953, Barros - Peña (INCO); 17 Los Canelos, Longaví, 2000 «m.,

Schonemann S. (BERL). MAULE: 192 Cauquenes, Ene. 25, 19000, Schonemann

S. (BERL); 13 (gen. prep.) Baños Cauquenes, 1901, P. Herbst (INCO). ÑU-

BLE: 17 Abanico, Antuco, Ene. 1, 1962, Mendez (INCO). O'HIGGINS: 29

Guacarhue, Caupolicán, Schonemann S. (BERL). SANTIAGO: 19 El Peumo,

Rio Maipo, Santiago, Nov., 1951, Peña (INCO); 1% El Canelo, Santiago, Dic.

26, 1946, L. E. Peña (INCO); 1gG (gen. prep.) Canelo, Etcheverry (INCO);

19 NO 7669 Santiago, Dr. Puelma (BERL). TALCA: 19 Fundo El Radal, 1300

m., Cordi.lera Talca, Ene. 5-8, 1951, Peña - Barros (INCO): 1% Rio Lontué,

Talca, Aravena (CEE). VALPARAISO: 19 Marga - Marga, Feb., 1919, P. Herbst

(CAS). Localidad Incierta: 23 El Peumo, Nov., 1949, Peña (INCO; 19 Pirámi-

de, J. Belmar (CEE); 17 Rio Temo, 1500 m., Ene. 9, 1964, L. E. Peña (INCO).

Sin localidad ni fecha: 23 Chle, E. C. Reed (USNM, INCO); 13 (gen. prep.)

dE Reed (ENCO); UF (INCO); 3.9 Ed. C. Reed (CAS).

DISCUSION. Esta es una especie bastante variable, pero no se han encontrado

variaciones constantes que permitan formar grupos bien definidos, talvez subespe-

cies.

El color del mystax, barba, vestidura mesonotal y los largos pelos de las pa-

tas, varían de color desde el blanco hasta el negro. El color de las tibias y tarsos

varía desde completamente negros hasta la mitad negra y la otra mitad rojiza;

algunos especmenes tienen las tibias cafés. El mesonotum es negro opaco o ne-

gro brillante con reflejos azulados.

Usando la combinación de los colores de las tibias, el mystax, y la barba,

que fueron los caracteres usados por Phi.ippi, Blanchard y Bromley para separar

las especies chilenas, se encontró que es posible hacer siete grupos: (1) todas las

tibias negras, mystax negro y barba blanca (3gZ y 109); (2) todas las tibias

negras, mystax y barba negra (1 y 52), esta combinación corresponde a

Laphria calogaster Ph'lippi; (3) todas las tibias bicoloreadas (base rojiza, ápice

negro), mystax y barba blanca (1H); (4) todas las tibias negras, mystax y barba

blanca (13); (5) todas las tibias bicoloreadas, mystax negro y barba blanca

(3 y 79). esta combinación corresponde a Laphria rufiventris Blanchard; (6)

todas las tibias bico/oreadas, mystax y barba negra (1gZ); (7) tibias anteriores

y medianas bicoloreadas, t:bias posteriores negras, mystax y barba blancas (23 y

69).

— 241 —

La genitalia de los machos no muestra diferencias entre estos grupos; la

funda del pene (Fig. 200) es idéntica en todos los machos estudiados. La vena

ninguna correlación entre este carácter y los grupos anotados. La distribución

tiene algunas veces una vena trunca en la base, pero no se ha encontrado

geográfica tampoco muestra ninguna correlación.

La descripción de Blanchard de £. rufiventris dice en relación con las patas:

“Patas muy pestañadas, negras, con la mitad de los muslos de un hermoso bermejo

vivo”. No se sabe si se refiere a los fémures o a las tibias cuando indica “muslos”;

parece que debe ser fémures, pero en su figura en Pl. IL, fig. 5, el fémur luce to-

talmente negro y la tibia muestra la mitad basal rojiza. Al parecer ningún autor

después de Blanchard ha encontrado especimenes con la mitad apical de los fé-

mures rojizos; ellos posiblemente han usado la descripción de Blanchard. Bromley

(1932: 268) presenta una clave para separar A. rufiventris de A. calogastra, pero

no indica si vió individuos de ambas especies; en su trabajo no indica el sexo

del material, y como esto lo indica para todo el resto del material estudiado en

la misma publicación, correspondiente a otros géneros, creo que no vió individuos

de rufiventris y calogastra.

Hay dos especimes de la coleción JIM con etiquetas manuscritas de Phili-

ppi: “Laphria anthracina Ph.” que es un nomen nudum, y “Santiago 1864 Ha-

merter”; en ambos especimenes falta la cabeza, el abdomen y algunas patas.

LAMPROZONA Loew

Lamprozona Loew 1851, p. 18; Hull, 1962, p. 401.

Automolina Hermann 1912, p. 101.

TYPO DEL GENERO: Lamprozona auricincta Loew, 1851, por monotipía.

Cabeza en vista frontal: un - cuarto más ancha que alta; vertex muy hundido;

ocellarium producido dorsalmente. Cabeza en vista lateral: región postocular

un - cuarto del ancho de los ojos; giba facial mo prominente, reducida al tercio

basal de la cara; antenas largas, tercer segmento antenal una - y - media vez los

dos segmentos anteriores combinados, cuarto basal delgado, ligeramente expandido

distalmente, comprimido, con una concavidad en el ápice cuya abertura está d'ri-

gida hacia el costado exterior, llevando una espina diminuta en el centro, sin

microsegmento; mystax de largas cerdas dispersas que nacen sobre toda la giba

facial, dirigidas en todas direcciones menos hacia arriba. Sin manchas mesonotales;

vestidura mesonotal de finos pelos cortos, deprimidos y unos pocos pelos largos

ralos; cerdas dorsocentrales corrientemente no definidas; vestidura del scutellum

semejante a la del mesonotum; 2-5 pares de cerdas scutelares. Costados del post-

mesonotum con un mechón de pelos cortos. Celda marginal cerrada, con un pe-

dicelo largo; cuarta celda posterior cerrada y pedicelada; R, termina casi en el

ápice del ala; R, termina lejos detrás del ápice del ala; celda anal cerrada con

un pedicelo corto; M, y m forman un ángulo de 909; m es algunas veces muy

corta, casi indefinida. Espina de las tibias anteriores ausente. Abdomen deprimi-

do, más ancho que el tórax. Alas alcanzan el ápice del abdomen. Tergite 8 an-

gosto, oculto bajo el tergite 7 (Fig. 211). Genitalia del macho rotada en cerca

de 1809; epandrium completamente dividido. Sin espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION: neotropical, 3 especies; 2 especies en Chile.

CLAVE PARA LAS ESPECIES CHILENAS DE LAMPROZONA

es Trocánteres, base de los fémures y tibias rojizas; costados del

postmesonotum con finos pelos blancos ..cicinninnnncncinecc..

Ss O A L. chilensis (Hermann) n. comb.

1% Patas negras; costados del postmesonotum con pelos cortos,

BLUESOS: NETOS td a L. auricincta Loew

Lamprozona auricincta Loew

(Figs. 203 - 205, 207, 208, 440)

Lamprozona auricincta Loew, 1851, p. 18, Chile, Schiner, 1866, p. 706; 1868, p.

171; Hermann 1912, p. 99; Stuardo, 1946, p. 83; Hull, 1962, p. 402.

Dasypogon sericeus Philippi, 1865, p. 691; Stuardo, 1946, p. 82; Hull, 1962, p. 402.

Dasypogon atratus Philippi, 1865, p. 687.

Lamprozona atrata (Philippi). Bromley, 1932, p. 268, Peulla; Stuardo, 1946, p.

83; Hull, 1962, p. 402, fig. 224, 670, 1308, 1517. y 2172.

Lamprozona castaneipes Bigot, 1878, p. 234, Chi:e; Hull, 1962, p. 402.

Cormans;s cyanescens Bigot, 1878 (nec cyanescens Rondani, 1848), p. 235, Chile.

Lamprozona cyanescens (Bigot). Hermann, 1912, p. 100.

Atomosia cyanescens (Bigot). Brethes, 1924, p. 105.

Atomosia chilensis Brethes, 1924 (nec chilensis Hermann, 1912), p. 105; Stuardo,

19025 Pp: 89.

Lamprozona chilensis (Brethes). Hull, 1962, p. 402.

TYPO: ubicación desconocida. Typo Z de D. sericeus y tipo 2 de D. atratus

en el Museo Nacional de Historia Natural, Santiago, Ch'le (vistos). Cotypos

(23) de C. cyanescens en el Hope Departament of Entomology, Oxford Univer-

sity, Inglaterra (vistos). Ubicación de los demás typos, desconocida.

— 243 —

DIAGNOSIS. Cuerpo (Fig. 203) y patas negras brillantes; antenas negras, mys-

tax negro; proboscis corta; abdomen ancho, más ancho apicalmente, deprimido,

glabro en las 2, con pelos dorados cortos y comprimidos en los ¿J; alas ligera-

mente fumosas.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara angosta, negra brillante con micropu-

bescencia plateada, la cual es más destacada a lo largo del borde de los ojos, pe-

los largos negros sobre toda la cara; frente negra, pelos frontales gruesos, negros,

abundantes cerca del borde de los ojos; oce:larium negro, ocelos café claros; cer-

das ocelares largas, negras. Cabeza en vista lateral (Fig. 204): cara plateada, li-

geramente proyectada más allá del borde del ojo; giba facial redondeada, baja;

mystax negro, de pelos semejantes a los de la parte superior de la cara; antenas

negras, primero y segundo segmentos con abundantes pelos largos negros, tercer

segmento una - y - media vez el largo de los dos primeros segmentos combinados

(Fig. 204); barba de abundantes pelos negros de tamaño mediano; área posto-

cular negra brillante con micropubescencia plateada en la base de los costados

y detrás del ocellarium; vestidura postocular semejante a la barba pero ligera-

mente menos densa; cerdas occipitales negras; proboscis corta, no más larga que

el tercer segmento antenal, negra, roma, con una definida constricción en el ter-

cio apical, finos pesos blancos dispersos en la mitad basoventral, pelos cortos ama-

rillos en el ápice; palpos maxilares cortos, con pelos negros. Pleura toráccica ne-

gra brillante, con micropubescencia plateada especialmente a lo largo de los bor-

des de los esclerites; cerdas mesepimerales finas, negras, con pelos dispersos, finos,

negros, de tamaño mediano; scutellum negro brillante; cerdas dorsocentrales no

definidas; 1-2 cerdas notopleurales negras; 2-3 cerdas intraalares negras; 1 cerda

postalar negra; 5 pares de cerdas escutelares largas, negras y fimas. Costados del

postmesonotum negros brillantes con un denso mechón de gruesos pelos negros.

Alas (Fig. 205) ligeramente ahumadas, con reflejos azulados, venas café oscuras.

Coxas negras brillantes con micropubescencia plateada y finos pelos blancos; fé-

mures negros brillantes con pelos negros deprimidos en el dorso y erectos, finos,

en su mayor parte blancos en el lado ventral, fémures posteriores con unas po-

cas cerdas negras, finas, cerca del ápice; tibias negras brillantes, con pelos negros

de diferentes largos, en el lado ventral los pelos son mayormente largos y bian-

cos; tibias anteriores y poster:ores con pelos dorados cortos, densos, a lo largo del

lado ventral; abundantes cerdas largas y negras en las tibias anteriores y media-

nas, algunas cerdas son tan largas o más largas que los dos primeros segmentos

tarsales juntos; tarsos semejante en color y vestidura a las tibias. Uñas negras.

Abdomen ancho, deprimido, negro brillante, tergites cubiertos de densos pelos

amarillos deprimidos, sternites con finos pelos blancos ralos, costados de los dos

primeros tergites con pelos de mediano largo, blancos o negros, y 3-4 cerdas ne-

gras o blancas. Genitalia (Fig. 208) rotada en 17092 - 1809, pequeña, corrientemen-

te oculta por el tergite 7; epandria con un proceso digitiforme en el lado ventral;

— 244 —

gonopodos g:obosos, menos de la mitad del largo del epandrium; hypandrium

plano; funda del pene como en la Fig. 207.

HEMBRA. Semejante al macho pero el abdomen es más ancho y falta la den-

sa vestidura amarilla, luce mas bien glabroso; genitalia oculta bajo el tergite 7,

corrientemente doblada ventralmente (Fig. 203); ovipositor corto.

MEDIDAS. Largo total 5.5 - 8.1 mm., promedio 6.2 mm.; largo de ala 4.8 - 6.9

mm., promedio 5.1 mm.; ancho de ala 1.4-2.2 mm., promedio 1.9 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 123 y 242. ACONCAGUA: 29 Entrance to

Tunel Aconcagua, 90 km. S. lilapel,Nov. 28, 1950, R. £ M. (CAS); 4Z (2 gen.

prep.) 12 Valle Los Piuquenes, Rio Blanco, Aconcagua, Feb. 7 - 12, 1964, L. Peña

(INCO); 192 10 km. E. of Zapudo, Aconcagua, Nov. 28, 1950 (CAS). ARAUCO:

19 Caramávida, 1000 m., Ñuble, Ene. 1-9, 1954, L. E. Peña (BRAS). CAUTIN:

29 12 km.. N. E. of Pucon, 380 mi., Ene. 12, R. £ M. (CAS, INCO); 12 10 mi.

Eo Bacon, Ene, 19591, KR: 8: My (CAS): O "20 kim, E. of Temuco, Ene 48

1951, R, £e M. (INCO); 12 (gen. prep). Toltén, Ene. 17, 1955, H. “Toro (CEE):

LINARES: 19 Cienaguilla, Parral, Ene., 1899, Schonemann (BERL). MAULE:

1 Baños de Cauquenes, Dic., 1904, P. Herbst (CAS). SANTIAGO: 13 Aculeo,

Santiago, Nov. 3-7, 1959, L. E. Peña (OTT); 13 Las Condes, Santiago, Dic.,

Centro Entomol. (CAS). VALDIVIA: 2 Valdivia, P. Herbst (CAS).

VALPARAISO: 1g 12 10 mi. N. of Concon, Dic. 16, 1950, R. £ M. (INCO»;

1 2 N9 158 Perales, Feb. 23, 1923, A. Faz (19 CAS, 1% INCO); 19 NO 28 Pera-

les, Ene., 1935, F. Ruiz (CAS); 192 NO 14 Salto, Valparaiso, Dic., 1928, Dr. Reed

(USNM). Localidad incierta: 1 Chiridangue (JIM); 19 NO 29 Rofuca, Ene.

22, 1930, F. Ruiz (CAS); 192 Toniemo, Ñuble, Feb. 15, 1951, L. E. Peña (BRAS).

Sin localidad ni fecha: 19 Chile, E. P. Reed (INCO); 1g 12 Chile, E. C.

Reed (CAS); 19 [typo de D. atratus] (JM); 19 [typo de D. sericeus] (JIM);

lg N% 2265, Chile, Scholz S. (BERL); 29 [cotypos de C cyanescens] NY 208, Bi-

got Coli, type Dip. 222 - 1/4 (OXP).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 440.

DSCUSION. Las hembras de esta especie son corrientemente más grandes que

los machos; las hembras ¡jóvenes tienen el abdomen más angosto y presentan re-

flejos purpúreos sobre los tergites y sobre el mesonotum; algunas variaciones en

el color de las patas han sido observadas, en su mayoría relacionadas con la pre-

dominancia de un color sobre el otro. Una Y de Valle Los Piuquenes, Rio

Blanco, Aconcagua, Feb. 7-12, 1964, L. E. Peña, tenía 23 huevos maduros en el

inter.or del abdomen (especimen aclarado).

— 245 —

Lamprozona chilensis (Hermann) n. comb.

(Fig. 206, 209-212, 437)

Automolina chilensis Hermann, 1912, p. 103, Concepción; Brom!ey, 1932, p. 268;

Stuardo, 1946, p: 83; Hull, 1962,—p. 271 y "409 f195=262, "607% 1327y SS5

TYPO.. 9. Concepción, Marzo 30, 1908, P. Herbst. en Zoologische Sammlung

des Bayerischen Staates, Munchen, Alemania (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; antenas y mystax negros; abdomen ancho, depri-

mido, con densos pelos cortos y grises, más abundantes en los ¿J; trocánteres, base

de los fémures y tibias rojizas; tres- cuartos apicales de los fémures y los tarsos

completos negros; alas hyalinas o ligeramente café.

REDESCRIPCION DEL TYPO (92). Cabeza en vista frontal (Fig. 209): cara

cubierta de densa micropubescencia plateada, ligeramente menos densa bajo las an-

tenas; frente con micropubescencia plateada rala; pelos frontales largos, negros,

ubicados a lo largo de los bordes de los ojos; ocellarium negro, semejante en ves-

tidura a la frente, ocelos café claros; cerdas ocelares largas, negras. Cabeza en vis-

ta lateral: cara plateada; mystax de largas cerdas negras dispersas, entremezcla-

das con fimos pelos cortos tambien dispersos; unos pocos pelos largos negros en-

tre la giba facial y la base de las antenas; antenas negras, primero y segundo seg-

mentos con unos pocos pelos gruesos, negros; segundo segmento globoso, más an-

cho que el primero; tercer segmento según ilustración en Fig. 206; barba de fi-

nos pelos blancos; área postocular negra, uniformemente cubierta por micropu-

bescencia plateada dispersa; vestidura postocular de fino pelo corto y blanco; cer-

das occipitales gruesas, de tamaño mediano, blancos, ordenadas en una fila de 8

cerdas detrás de cada ojo; proboscis corta, roma, negra, con una constricción en

la parte ventral del tercio apical, pelos largos fimos, blancos, en la mitad baso-

ventral, pelos cortos amarillos en el ápice; palpos maxilares pequeñs, negros con

pelos blancos. Protorax negro, uniformemente cubierto de micropubescencia pla-

teada y pelos blancos finos dispersos; cerdas del collar, blancas. Pleura toráccica

cubierta de densa micropubescencia plateada excepto en el centro de la meso-

pieura y de la sternopleura, unos pocos pelos blancos finos en la parte dorsal

de la mesopleura y de la sternopleura; cerdas mesepimerales largas, finas, blan-

cas. Mesonotum y scutellum negro, desuniformemente cubierto de abundantes pe-

los finos, cortos, amarillos y aprensados; 3 - 4 pelos finos, largos y blancos detrás de

los callos humerales; 3 cerdas dorsocentrales finas, negras, poco definidas, ubica-

das cerca del borde posterior; 1 cerda notopleural negra y fina; 1 fina cerda in-

traalar negra; 1 fina cerda postalar negra; 2 pares de finas cerdas scutelares ne-

gras. Costados del postmesonotum negros, cubiertos de densa micropubescencia

plateada y con un mechón de finos pelos cortos y blancos. Alas hyalinas, ligera-

mente ahumadas, con micropubescencia distribuida en forma dispareja, más uni-

forme hacia el ápice, venas negras. Coxas negras, cubiertas de micropubescencia

plateada y finos pelos blancos dispersos; trocánteres café rojizos con finos pelos

blancos dispersos; fémures negros, rojizos en la base y en el borde distal, cubier-

tos con cortos pelos finos blancos, más largos en el lado ventral; fémures ante-

riores y medianos con 3 cerdas negras en el lado dorsal cerca del ápice; fémures

posteriores con 3 cerdas negras en una fila en los costados laterodorsales y late-

roventrales; tibias café rojizas, cubiertas de fimos pelos cortos blancos, entremez-

clados con unos pocos pelos más largos, blancos, preferentemente en el costado

posterior, y largas cerdas negras, las cuales son mas abundantes en las tibias an-

teriores y medianas; tarsos mas ocuross que las tibias pero con vestidura semejan-

te; borde ventral de las tibias posteriores con densos pelos cortos en los

tres - cuartos distales. Uñas negras. Abdomen negro brillante, tergites cubiertos de

pelos cortos blancos, aprensados, ligeramente mas largos a lo largo de los bordes

de los tergites 1-4 y claramente mas largos en el primer tergite; sternites café

oscuros, mas oscuros en el borde anterior, con finos pelos cortos, erectos, disper-

sos. Ovipositor (Fig. 212) corto, oculto por el tergite 7.

MACHO. Semejante a la hembra; abdomen ligeramente mas angosto, tergite 8

muy angosto (Fig. 211); pelos en los tergites más densos, abdomen luce opaco

o grisáseo. Genitalia pequeña, café rojiza (Fig. 210).

MEDIDAS. Largo total 6.6 - 8.6 mm., promedio 8.2 mm. [typo 6.6 mm.]; largo

de ala 5.2 -7.8 mm., promedio 7.2 mm [typo 5.2 mm.]; ancho del ala 1.6 - 2.4 mm.,

promedio 2.1 mm [typo 1.6 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 3% y 59. ARAUCO: 13 Contulmo, Mayo 6,

1903, Schonemann S. (INCO); 192 Contulmo, Mayo 7, 1903 (BERL); 17 Contul-

mo ,Mayo 11, 1903, Schonemann (INCO); 12 Contulmo, Mayo 13, Schonemann S.

(BERL); 192 Contulmo, Mayo 14, 1903, Schonemann S. (INCO); 14 Contul-

mo, Mayo 19, 1903, Schonemann S. (BERL). CONCEPCION: 1 9 [typo] Concep-

ción, Mar. 30, 1908, P. Herbst (BERL). MALLECO: 1% Angol, 1200 m., Mar.

10, 1929 (INCO). z

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 437.

DISCUSION. La cantidad de color rojo en los fémures varía desde un - sépti-

mo hasta un - cuarto de la parte basal; las alas en el typo muestran una clara pu-

bescencia, mas abundante hacia el tercio apical; en otros especimenes estudiados,

la pubescencia es menos, y en 3 de ellos la pubescencia es indistincta.

— 247 —

197.

198.

199.

200.

201.

202.

203.

Andrenosoma rufiventris, genitalia Y en vista dorsal.

ale

Lamprozona auricincta,

cerco

dististylus

epandrium

gonopodo

hypandrium

funda del pene

placa subanal

éptimo sternite

sexto tergite

séptimo tergite

octavo tergite

noveno tergite

, cabeza en vista lateral.

alas

, funda del pene en vista lateral.

, genitalia GS (después de aclarada) en vista la-

teral, extendida.

, OVIpositor.

vista dorsal.

— 248 —

ms a GF ==

Pd 7

V/ ,

VW Y)

IAN Éi

ant

Lamprozona auricincta, cabeza en vista lateral.

JE:

ala

chilensis, antena.

auricincta, funda del pene en vista lateral.

, genitalia masculina en vista lateral.

chilensis, cabeza en vista frontal.

, genitalia (después de aclarada), en vista lateral.

chilensis, vista posterior del abdomen luego de retirar la

genitalia del Z.

antena

barba

cerco

ojo

epandrium

cara

frente

pelos frontales

gonopodos

hypandrium

mystax

ocellus

cerdas ocelares

cerdas occipitales

ocellarium

proboscis

placa subanal

séptimo sternite

octavo sternite

sexto tergite

séptimo sternite

octavo tergite

vertex

— 250 —

=O l y

> y

5 ==

=>3

= =>

SUBFAMILIA MEGAPODINAE

Las especies chilenas de Megapodinae, pueden ser reconocidas por la siguien-

te combinación de caracteres: palpos de un segmento; celda marginal y cuarta

posterior cerradas; proboscis excepcionalmente larga; tercer segmento antenal con

un corto microsegmento excavado, con una pequeña espina en el centro de la

concavidad; espina de las tibias anteriores presente; epandrium e hypandrium

fusionado, formando un anillo completo; ovipositor sin espinas en los acantho-

phor'tes.

La subfamilia está representada en Chile por 1 género con 2 especies.

PRONOMOPSIS Hermann

Bronomopsis Hermann 1912, p. 18; Carrera, 1949, pp. 5,56 y 8; Hull p. 422

Artigas, 190% pi :9.

TYPO DEL GENERO: Pronomopsis chalybea Hermann, 1912, por designación

original.

Cabeza en vista frontal un - tercio más ancha que alta; vertex moderadamen-

te hundido; ocellarium bajo, ocelos grandes. Cabeza en vista lateral: área posto-

cular un - décimo del ancho del ojo; giba facial muy grande, de una forma muy

característica, prolongada hacia adelante en forma de pico, el largo totai de la

parte basal, iguala en largo al ancho de los ojos; la gíba facial ocupa toda la ca-

ra. Antenas grandes, tercer segmento fuertemente dilatado más allá del tercio ba-

sa, en los dos - tercios apicales casi circular, comprimido, con una diminuta espina

en el ápice. Mystax reducido a los costados y en el borde oral de la giba facial,

quedando el área central de la giba facial desnuda. Mesonotum negro briilante,

sin manchas. Vestidura mesotonal de pelos cortos, uniformes, dispersos; cerdas

dorsocentrales no definidas. Scutellum cubierto de pelos semejantes a los del me-

sonotum; cerdas scutelares ausentes o indefinidas. Costados del postmesonotum con

pelos semejantes a los del scutellum y del mesonotum. Celda marginal cerrada y

pedicelada; cuarta celda posterior cerrada y pedicelada; R, alcanza el borde del

ala antes del ápice, luego de una fuerte curvatura que forma un ángulo de cer-

ca de 90%; R, alcanza el borde del ala detrás del ápice, se extiende paralela a

M; celda anal cerrada en el borde del ala; M, y m forman un ángulo de 1109,

Esp“na de las tibias anteriores larga, gruesa. Abdomen deprimido, atenuado a par-

tir del quinto segmento, primeros 4 segmentos tan anchos como el mesonotum;

primer tergite aparentemente dividido en la línea dosocentral por una área mem-

branosa (Fig. 215). Alas alcanzan más allá del término del abdomen. Genitalia

del macho rotada en 1809, epandrium de una pieza, formando un anillo comple-

— 252 —

to alrededor de la genitalia, hypandrium incluido en este anillo; cercos grandes;

gonopodos con una profunda muesca resondeada en el borde posterior; dististylus

en forma de gancho en el ápice (Fig. 216); funda del pene según Fig. 214.

DISTRIBUCION. Neotropical, 3 especies; 2 en Chile.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE PRONOMOPSIS

1 Patas de color café oscuro uniforme, casi negras; antenas negras

ATEN CI e p on s nus Pa chalybea Hermann

¡q Patas total O parcialmente rojizas o amarillas; tercer segmento an-

tenal rojo vivo ....... RO E ELO to Das at dodo 2

2(1>. Iibias. y Larsos: Tofos (ver. discusión) ita! P. rubripes Hermann

Ze libias y basitarsos anteriores amarillos, el resto de las patas

Ap o pias 1 E Malabo renSpiAntoas

Pronomopsis chalybea Hermann

(Fig. 411)

Pronomopsis chalybea Hermann 1912, p. 18-20, Argentina; Carrera, 1949, p. 8,

Argentina: Mendoza; Hull, 1962, p. 423; Artigas, 1964, p. 8.

TYPO. 2, Argentina, Sammlung, F. Hermann; en el Zoologische Sammlund

des Bayerischen Staates, Munchen, Germany (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro brillante con reflejos azulados, parte dorsal de la

giba facial amarilla, mystax negro; antenas negras; patas uniformemente café

oscuras, Casi negras.

MEDIDAS DEL TIPO. Largo total 23.1 mm.; largo del ala 15.2 mm.; ancho

del ala 5.0 mm.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 23.1 mm.; largo del ala 15.2 mm; ancho

del ala 5.0 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 19 [typo] etiquetada: “Nova Acta 1912 XCVL)

Argentina; Pronomopsis chalybea Herm. Type; Sammlung F. Hermann”

(MUNCH).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 411.

DISCUSION. Esta especie fué descrita de Argentina, y hasta ahora no ha sido

encontrado en Chile.

— 253 —

Pronomopsis rubripes Hermann

(Figs. 213, 215-219, 412)

Pronomopsis rubripes Hermann, 1912, p. 20, Chile, Perú y Bolivia; Hull, 1962,

p- 423, 1185. .240,1660,1238) 1242105572144 2Artgas 100 po

A O o LES

TYPO. 9, Jul'aca, Perú, June 15, 1903, en el Zoologische Sammlung des Ba-

yerisches Staates, Munchen, Alemania (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro bri-lante; segundo y tercer segmento antenales ro-

jizos; fémures negros; tibias y tarsos rojizos; genitazia del macho negra (Fig. 216);

funda del pene según se ilustra en Fig. 219.

MACHO. Cabeza en vista frontal: lado dorsal de la giba facial amarilla, costa-

dos negros con finos pelos negros; cara negra; pelos frontales finos, negros, ubi-

cados principalmente a lo largo de los bordes de los ojos y detrás de las antenas;

ocellarium negro, ocelos café claros; cerdas ocelares fimas, negras. Cabeza en vista

lateral (Fig. 213): giba facial amarilla en el dorso, costados negros; primer seg-

mento antenal negro con pelos negros; segundo segmento café rojizo con pelos

negros en el lado ventral y 2-4 largas cerdas negras en el lado dorsal; tercer

segmento antenal y microsegmento rojizos, tercer segmento cubierto de fina micro-

pubescencia plateada d'spersa, que le da una apariencia sedosa; barba de pelos

de tamaño mediano, ralos; área postocular negra con vestidura negra; pelos occi-

pitales no distintos detrás del ocellarium, 3 largas cerdas negras en el borde dor-

sal del ojo; proboscis negra brillante, café rojiza en el ápice, pelos negros en la

parte posteroventral y finos pelos biancos en el ápice; palpos maxilares negros

con gruesos cerdas negras. Protorax negro con finos pelos negros; cerdas del co-

ilar largas, semejantes a pelos, uniformemente distrbuidas; cerdas mesepimera-

les negras. Mesonotum y scute.lum negros, semejantes en vestidura a las pleuras

torácicas; callos humerales con 4-7 cerdas cortas; 1 fina cerda notopleural ne-

gra, a menudo ausente o indistincta; sin cerdas postalares ni intralares. Finos

pelos dispersos negros sobre todo el postmesonotum. Alas (Fig. 217) café rojizas

en la mitad basal del área costal, el resto café oscuro, algunos especímenes con

el centro de las celdas marginal, primera basal y primera submarginal, café cla-

ras casi hyalimas. Coxas, trocánteres y fémures negros briilantes con pelos cortos,

negros, dispersos, unos pocos pelos más largos en el costado ventral; cerdas esca-

sas, negras; tibias y tarsos rojo brillante, pelos cortos amarillos en el lado ven-

tral, cerdas cortas, negras brillantes; espinas de las tibias frontales rojas en los

tres - cuartos basales, el cuarto apical negro. Abdomen negro brillante con reflejos

azules o púrpuras, cubierto de cortos pelos negros, ligeramente más largos en los

costados de los tergites 1-3 y en los esternites. Genitalia negra con pelos negros

(Fig. 216, 218); funda del pene según Fig. 219.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor deprimido, ancho; segmento 8 mas

bien cónico, con una depresión en cada costado; segmento 9 corto.

MEDIDAS. Largo total 14.9-19.0 mm., promedio 17.0 mm.; largo de ala

8.9 - 16.1 mm., promedo 15.0 mm.; ancho de ala 2.6 - 3.4 mm., promedio 2.8 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 163 y 99. ANTOFAGASTA: 23 29 Catara-

pe, Antofagasta, Dic. 6, 1961, Peña (INCO); 237 19 Encrusijada, Antofagasta,

Dic. 2, 1961, Peña (INCO); 3Z 19 Inacaliri, Antofagasta, Feb. 1-14, 1960, Peña

(INCO); 23 Potor, Dic. 1961, L. E. Peña (INCO); 37" I2-Q. Hekar, N. Vol:

cano Laskar, Antofagasta., Dic. 4, 1961, L. E. Peña (INCO); 1% O. Mucar,

4150 m., Antof., Dic. 17, 1952, L. E. Peña (INCO); 23 Siloli, Antofagasta, Dic.

UNIDO A(GEE) 1 1:20. Tumbre,, Colchagua: [1], Febrero 1,1953, LL. E: ¿Peha

(BRAS); 192 Tumbre, 2500 m. W. Volcano Laskar, Ene., 1953, F. Soza (INCO).

Localidad incierta: 2 9 Corral Blanco, Dic. 5, 1961, L. E. Peña (INCO). Perú: 1 9

[typo], Juliaca, Junio 15, 1903 (MUNCH).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Según ilustración en Fig. 412. La localidad

“lumbre, Colchagua”, es un error, y no se muestra en el mapa; se ha anotado

Tumbre, Antofagasta, que es la ubicación correcta de Tumbre.

DISCUSION. El dististyius se muestra en la Fig. 216 a través de una muesca

en los gonopodos, esto se logra sólo en ejemplares aclerados, al natural, esta es-

tructura está oculta bajo los gonopodos y sólo es visíb.e el ápice de la funda del

pene.

Los 16% y 92 anotados en el material examinado, tienen todos los fému-

res, tibias y tarsos rojos.

Se han estudiado además 6% y 32 (no anotados en la lista), los cuales son

ligeramente diferentes de los típicos rubripes en la coloración de las patas; 3Z

IO (Or Putre; Ática, 9650 m. Feb. 23, 1918 (INGO), 1. Tocara, Arica, Jul

10, 1962, L. E. Peña (INCO) y 27 y 12 Huanta, PERU, 2400 m., Mar. 16,

1941, F. Woytoksky (INCO), tienen el ápice de las tibias y tarsos negros; 27

y 19 de Putre, Arica, 3650 m. Feb. 23, 1948 (INCO), tienen el centro de los

fémures rojos y la base y el ápice negros, las tibias rojas con el ápice negro, y los

tarsos totalmente negros; 1 de Huanta, PERU, 2400 m. Mar. 15, F. Woytkosky

(INCO) tiene las patas negras, excepto los tres - cuartos basales de las tibias pos-

teriores que son rojos. “Todos estos especímenes tienen los tarsos negros, lo cual

los diferencia de rubripes típico que tiene los tarsos rojos, esto será considerado

en este trabajo como variaciones de rubripes hasta que se disponga de más ma-

terial de estas formas para considerar una solución taxonómica. La mayoría de

estos especimenes son de localidades mas al norte que las localidades de los es-

pecimenes de tibias y tarsos rojos; estas localidades no se han indicado en el ma-

pa de distribución.

— 255 —

Pronomopsis talabrensis Artigas

(Fig. 486)

Pronomopsis talabrensis Artigas, 1964, p. 6-8, figs. 1, 3, 7, 8, 12 y 14.

TYPO. Talabre, Feb. 26, 1960, Peña, en el Departamento de Zoología, Uni-

vers dad de Concepción, Chile (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro brillante; alas café oscuras, mas oscuras en el bor-

de costal; tibias y basitarsos anteriores amarillos, el resto de los segmentos tarsa-

les anteriores negros; tibias y tarsos medianos y posteriores negros.

HEMBRA. Cabeza en vista frontal: giba facial amarilla en el dorso, los costa-

dos negros, con finos pelos negros; cara negra; pelos frontales finos, negros, loca-

lizados preferentemente a lo largo de los bordes de los ojos y detrás de las ante-

nas; ocellarium negro, ocelos café oscuros; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista

lateral: primer segmento antenal negro con pelos negros, segundo segmento café

rojizo con pelos negros en el lado ventral y 3-4 largas cerdas negras en el dor-

so; tercer segmento antenal amarillo rojizo, microsegmento café; barba de pelos

negros dispersos; área postocular negra, vestidura negra; cerdas occipitales poco

definidas, una línea de 10-12 pelos largos, negros y gruesos a lo largo del borde

de los ojos; proboscis negra brillante con pelos largos y negros en la base, pelos

cortos en el ápice; palpos maxilares negros con gruesos pelos setiformes negros.

Protórax negro con finos pelos negros; cerdas ocelares finas, negras. Pleura torá-

cica negra brillante con finos pelos negros dispersos; cerdas mesepimerales negras.

Mesonotum negro con finos pelos cortos negros. Alas café oscuras, mas oscuras en

el área costal. Coxas, trocánteres y fémures negros brillantes con pelos cortos ne-

gros, algunos pezos mas largos en la parte ventral; tibias y basitarsos anteriores -

amarillos, el resto de los segmentos tarsales anteriores negros; tibias y tarsos me-

dios y posteriores negros; espina de las tibias anteriores amarilla en los tres - cuar-

tos basales, cuarto apical negro. Uñas negras brillantes, ligeramente café en el

cuarto basal. Abdomen negro brillante con refiejos azulados, cubierto de cortos

pelos negros en el dorso, pelos mas largos en los costados de los esternitos. Ovi-

positor negro, cónico, deprimido, tergite 8 con una depresión en cada lado, ter-

gite 9 diminuto; pelos del ov'positor negros.

MACHO. Desconocido.

MEDIDAS. Largo total 21.0 - 25.0 mm., promedio 22.6 mm. [typo 21.0 mm.];

largo de ala 17.0-19.0 mm., promedio 17.4 mm. [typo 17.0 mm.]; ancho de ala

5.0 -6.5 mm., promedio 5.6 mm [typo 5.0 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 59. ANTOFAGASTA: 19 Encrucijada, Dic. 2,

1961, L. E. Peña (INCO); 19 [typo] Talabre, Feb. 26, 1960. L. E. Peña (INCO);

0 tumbre.Eeb. 2629) 1960, 3 E-MPena (INCO):

DISTRIBUCION GEOGRAFICA: Ilustrada en Fig. 486.

— 256 —

Lamprozona chilensis, ovipositor (luego de aclarado), en vista ventral.

Pronomopsis rubripes, cabeza en vista lateral.

Lamprozona chilensis, funda del pene en vista lateral.

Promonopsis rubripes, unión toráccico-abdominal.

Es ” —, genitalia Y en vista lateral.

¡BA 06 ala:

cerco

dististylus

epandrium

gonopodo

halter

hypandrium

mesonotum

metanotum

postmesonotum

funda del pene

pteropleuron

primer tergite

segundo tergite

séptimo tergite

octavo tergte

placa subanal

mesoscutellum (scutellum)

séptimo esternite

ala

— 257 —

SUBFAMILIA ASILINAE

Las especies chilenas de Asilinae se pueden reconocer por la siguiente com-

binación de caracteres: palpos maxilares de un segmento; celdas marginal y cuar-

ta posterior cerradas; tercer segmento antenal con un largo y delgado stylo y un

corto microsegmento intermediario, los dos comb'nados son por lo menos del

mismo largo que la mitad del largo del tercer segmento, excepto Lycomyia (Fig.

202); epandrium y hypandrium no fusionados; sin espina en las tibias frontales;

ovipositor sin espinas en los acanthophor:tes, si hay algunas pequeñas espinas

(Eccritosia rubriventris, Fig. 373 y Cratolestes chiliensis, Fig. 230 y 231), estas es-

tán ubicadas en los cercos.

La subfamilia está representada en Chile por 20 géneros y 40 especies.

ATRACTOCOMA n. gen.

TYPO DEL GENERO: Atractocoma nivosa n. sp., aquí des'gnado.

Cabeza en vista frontal un - sexto mas ancha que alta; vertex profundamente

hundido; ocellarium de tamaño moderado, ocelos grandes. Cabeza en vista lateral:

área postocular un - quinto del ancho del ojo; giba facial indistincta, cara ligera-

mente producida; antenas con el primer segmento dos veces el largo del segundo,

tercer segmento ligeramnte mas largo que el tercero, expandido en el quinto

distal y con una corta espina en el ápice; mystax moderadamente denso, ocupan-

do casi toda la cara, dejando la gena libre de pelos, compuesto de cerdas grue-

sas largas, entremezcladas con pelos cortos fusiformes. Mesonotum con manchas

poco definidas; cubierto por dispersos pelas cortos normales, en los bordes ante-

rior y laterales se mezclan con pelos fusiformes; 5-7 cerdas dorsocentrales. La ma-

yor parte del cuerpo y las patas con abundantes pelos fusiformes los cuales al

menos en los tergites abdominales están entremezclados con cortos pelos norma-

les. Scutellum con pelos fusiformes de tamaño mediano; 5-7 pares de cerdas scu-

telares. Costados del postmesonotum con micropubescencia, sin pelos. Celda mar-

ginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas; R, angulada en la base, a:can-

zando el borde del ala antes del ápice; R, alineada con R PE alcanzando el

borde del ala detrás del ápice; celda anal cerrada, con un corto pedicelo; M,

y m forman un ángulo de 900. Espina de la tibia anterior ausente. Abdomen de

los machos ligeramente atenuado, suavemente depr'mido.. Alas no alcanzan el ex-

tremo del abdomen. Genitalia del macho de tamaño moderado, no rotada; hypan-

drium grande, ligeramente doblado en el ceníro; epandria de largo moderado,

puntudo en el extremo, bordes ventrales claramente membranosos; gonopodos

cortos, desde una vista lateral, parcialmente ocultos por el hypandrium y los epan-

dria. Hembras desconocidas.

— 259 —

DISTRIBUCIÓN. Neotropical (Chile), 1 especie, Atractocoma nivosa n. sp. Es-

te género es semejante a Zoticus dei cual puede separarse por el característico pelo

fusiforme que cubre gran parte del cuerpo; en Zoticus todo el pelo es normal.

El nombre Atractocoma se refiere al tipo fusiforme del pelo que cubre el

cuerpo (arpakros = huso; kouy = pelo).

Atractocoma nivosa n. sp.

(Figs. 220 - 222, 488)

TYPO. £, Laguna Buenos Aires, Chile Chico, Aysen, Dic. 24 - 31, 1960, Peña;

este especimen está depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad

de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo café, cubierto de micropubescencia dorada oscura; patas

café rojizo oscuras; mystax blanco; cerdas mesonotales negras; cerdas dei abdomen

y las patas blancas, algunas cerdas negras en la parte ventral de los tarsos; alas

hyalinas; genitalia negra.

DESCRIPCION DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal: cara y frente des-

uniformemente cubiertas de micropubescencia plateada, menos densa en la frente;

ocellarium y parte posterior del vertex con micropubescencia rala dorada oscura;

pelos frontales blancos, formando una fila que se extiende hasta bajo el nivel de

las antenas; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral (Fig. 221): cara gris

y negrusca; mystax de pelos blancos, 7 pares de largas cerdas gruesas blancas en

el borde oral; antenas negras, primero y segundo segmentos con pelos negros cor-

tos, pelos blancos entremezclados en el lado ventral del primer segmento; barba

blanca; área postocular desuniformemente cubierta de micropubescencia dorada

oscura, vestidura de pelos cortos dispersos; cerdas postoculares blancas; 7 cerdas

occipitales negras en cada lado del vertex; proboscis negra brillante con unos po-

cos pelos finos,largos y blancos en el lado ventral, pelos cortos en el extremo.

Protórax negro, desuniformemente cubierto de micropubescencia dorada, pelos

blancos, más finos en los lóbulos protorácicos; cerdas del collar blancas. Pleura

torácica con micropubescencia dorada oscura; pelos blancos; un grupo de finos

pelos largos, normales, no fus:formes, en las sternopleuras y las hypopleuras; 8

cerdas mesepimerales blancas en una fila. Mesonotum desuniformemente cubierto

de micropubescencia dorada oscura, sin lineas centrales ni manchas laterales dis-

cernibles, pero algunas manchas negras ordenadas simetricamente; vestidura de

finos pelos cortos negros, dispersos, a lo largo de los bordes en el cuarto anterior,

hay largos pelos fusiformes blancos; scutellum desuniformemente cubierto de mi-

cropubescencia dorada oscura y con pelos largos gruesos blancos uniformemente

repartidos; 5 cerdas dorsocentrales negras; de tamaño mediano; 2 cerdas intraa-

lares negras; 2 largas cerdas postalares negras; 6 pares de cerdas scutelares, 2 pa-

— 260 —

res centrales café oscuras, el resto de las cerdas blancas. Alas (Fig. 222) hyalinas.

Coxas semejantes en cobertura a la pleura torácica, pelos y cerdas blancas; pa-

tas café rojizo oscuro con pelos cortos blancos deprimidos y cerdas también

blancas; cerdas café oscuras en la parte ventral de los tarsos y en la parte distal

ventral de las tibias medianas y posteriores. Uñas negras, tercio basal café. Abdo-

men café oscuro con micropubescencia dorada oscura; vestidura de pelos finos

cortos negros dispersos y pelos fusiformes blancos deprimidos, los pelos blancos

forman una ancha banda cerca del borde anterior, excepto en la línea dorsocen-

tral y en los costados de los tergites, donde ellos están mas cerca del borde pos-

terior; cerdas laterales de los tergites blancas. Genitalia (Fig. 220) en gran parte

negra, pelos blancos; hypandrium café rojizo; borde ventral expandido de los

epandria de color café claro.

HEMBRA. Desconocida.

El nombre nivosa se refiere a la apariencia nevada que le proporcionan los

pelos fusiformes, deprimidos y blancos.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 9.8 mm; largo de ala 6.6 mm; ancho de

ala 1.6 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 13 [typo] AYSEN, Laguna Buenos Aires, Chile

Chico, Dic. 24-31, 1960, Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 488.

DISCUSION. Esta especie difiere de otras especies estudiadas en que posee pe-

los fusiformes y una notabl expansión en el borde ventral de los epandria.

CHILESUS Bromley

Chilesus Bromley, 1932, p. 272; Hull, 1962, pp. 536 - 538.

TYPO DEL GENERO: Chilesus geminatus Bromley 1932, por designación

original.

Cabeza en vista frontal un - cuarto mas ancha que alta; vertex profundamente

hundido; ocellarium grande con grandes ocelos. Cabeza en vista lateral: área pos-

tocular un - cuarto del ancho del ojo; cara plana, ligeramente elevada en el bor-

de oral; antenas largas, el primer segmento dos veces el largo del segundo;

tercer segmento comprimido tan largo como los dos primeros combinados micro-

segmento corto, portando un stylo que es tres - cuartos mas largo pero del mismo

ancho; largo del stylo, un - tercio del largo del tercer segmento antenal; mystax

reducido al borde oral. Mesonotum con líneas centrales y manchas laterales; ves-

tidura de pelos cortos dispersos, los cuales son mas largos detrás de la sutura

— 261 —

transversa; 5-6 cerdas dorsocentrales. Scutellum con pelos dispersos de tamaño

mediano; 3-4 pares de cerdas scutelares. Costados del postmesonotum con un

mechón de pelos largos. Celdas marginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas;

R, y R, forman una horquilla mas o menos simétrica en la base; R, termína

antes del ápice del ala y R, detrás del ápice; celda anal cerrada con un corto

pedicelo; M, y m forman un ángulo de 1209. Espina de las tibias anteriores

ausente. Abdomen largo, ligeramente atenuado, ligeramente deprimido; 1-4 cer-

das bien definidas en los costados de los tergites. Alas no alcanzan el extremo del

abdomen. Genitalla del macho pequeña, no rotada; hypandrium corto; epandria

distalmente atenuado, con un proceso digitiforme en el borde dorsal, ápice de los

epandria dirigidos posteriormente; gonopodos mas de la mitad del largo de los

epandria. Genitalia femenina corta, ligeramente comprimida; sin espinas en el

oOvipositor.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 1 especie, Chilesus geminatus Bromley.

Este género esta proximamente relacionado a Lycomyia Bigot, del cual pue-

de separarse por: el relativo largo de los segmentos antenales, microsegmento y

stylo (Figs. 223 Chilesus y 292 Lycomyia); el ancho de la cara es en Lycomyia

un -sexto del ancho de la cabeza, en Chilesus esta es de un - cuarto; los epan-

dria están dirigidos posteriormente en Chilesus y doblados en ángulo recto en

Lycomyia.

Chilesus geminatus Bromley

(Figs. 223 - 226, 495)

Chilesus geminatus Bromley, 1932, p. 272, Magallanes, Lago Blanco Chubut, N.

W. Patagonia (Argentina); Stuardo, 1946, p. 84; Hull, 1962, p. 538, Fig. 210,

IDA SIA 229 Sy Z SS!

TYPO. ¿Z, S. Chile, Magallanes Terr., Z. H. Gaudie, en el British Museum,

Londres, Inglaterra (no visto); 1% paratypo, visto.

DIAGNOSIS. Tórax y abdomen con micropubescencia gris; patas cafés; mys-

tax amarillo; cerdas mesonotales blancas; genitalia negra; alas hyalinas.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y frente cubiertas de densa micropu-

bescencia amarilla, mas densa en la cara; pelos frontales negros y amarillos en-

tremezclados; ocelos amari:los; gruesas cerdas ocelares prociinadas, entremezcladas

negras y amarillas. Cabeza en vista lateral (Fig. 223): cara dorada; mystax de

largos y gruesos pelos amarillos localizados en el borde oral, formando 1-3 filas,

los pelos mas finos están en el área central baja de la cara; antenas café oscuras,

primero y segundo segmentos con pelos cortos megros, umos pocos pelos blan-

cos entremezclados en el primer segmento; barba amarilla; área postocular des-

uniformemente cubierta con micropubescencia plateada y amarilla, vestidura de

262. =

finos pelos amarillos, la mayoría concentrados cerca del borde de los ojos; cer-

das postoculares amariilas, 2 o 3 cerdas negras entremezcladas en la parte basal;

7-10 gruesas cerdas occipitales amarillas; proboscis negra brillante, ligeramente

deprimida en el ápice, con pelos finos largos en la mitad basoventral y cortos

pelos amarillos en el ápice; palpos maxilares negros, pelos blancos, ligeramente

amarillos en el ápice. Protórax negro con micropubescencia gris dispersa, pelos

finos, blancos, unos pocos pelos negros entremezclados; cerdas del collar gruesas,

largas, amarillas, unas pocas cerdas en los costados detrás del collar. Pleura torá-

cica desuniformemente cubierta de micropubescencia plateada, dorada en parte,

pelos finos largos dispersos en la pleura; 6-8 cerdas mesepimerales amarillas,

unos pocos pe.os5 blancos frente a las cerdas; 3 largas cerdas gruesas amarillas

en el metepisternum. Mesonotum rojo, desuniformemente cubierto de micropubes-

cencia plateada, lineas centrales y manchas laterales negras, vestidura negra; scu-

tellum en su mayor parte cubierto por micropubescencia gris y con cortos y

débiles pelos negros dispersos, algunos pocos pelos blancos entremezclados; 3 cer-

das notopleurales amarillas; 5 cerdas intraalares amariilas, 3 juntas y 2 aparte;

3 cerdas postalares marilias; 5-6 cerdas dorsocentrales amarillas; 3-4 pares de

cerdas scutellares amarillas. Costados del postmesonotum con micropubescencia

plateada y amarilia y finos pelos amarillos. Alas (Fig. 224) en su mayor parte

hyalinmas, venas café. Coxas cubiertas de densa micropubescencia amarilla, pelos

y cerdas amarilias, mas abundantes en la parte anterior de las coxas frontales y

escasas en las coxas posteriores; fémures café a café rojizo, mas claros en la par-

te ventral y algunas veces cerca de la base; tibias y tarsos cafés, tibias posteriores

y el segmento tarsal apical mas oscuro; vestidura de cortos pelos amarillos depri-

midos; cerdas de café rojizas a amarillas; en los tarsos cortas cerdas negras, espe-

cialmente en el lado ventral. Uñas negras, cuarto basal rojízo. Abdomen rojizo,

cubierto de micropubescencia gris, con una línea mediodorsal negra en cada ter-

gite, a lo largo de todo el abdomen; vestidura de finos pelos amarillos depri-

midos; cerdas amarillas en los costados de los tergites. Genitalia (Fig. 225) pe-

queña, mas angosta que el último segmento abdominal, negra o roj'za, con pelos

negros; bordes de los epandria con pelos amarillos.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Fig. 226) rojizo, el noveno seg-

mento y los cercos, negros; la mayoría de los pelos de los cercos dirigidos hacia

adelante.

MEDIDAS. Largo total 22.0-25.0 mm, promedio 24.0 mm; largo de ala

13.2 - 15.0 mm, promedio 14.1 mm; ancho de ala 2.7 -3.1 mm, promedio 2.9 mm

(las medidas incluyen los datos indicados para el typo).

MATERIAL EXAMINADO. 33,19 y 1 (gen. miss). AYSEN: 137 Balma-

ceda, Aysen, Ene. 17 -20, 1961, Peña (INCO). MAGALLANES: 19 Cerro Guido,

Ene., 1964, M. Alvarez (INCO); 1 (gen. miss.) Magallanes, 1932, Dr. Reed (CAS).

— 263 —

Argentina: 1% Valle del Lago Blanco, Chubut, Patagonia, J. Koslowsky, 1904 - 26

(BRID; 13 [paratypo] N. W. Patagonia, Chubut, Dic., 1920, H. E. Box

(BRIT).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 495.

DISCUSION. El color de los fémures varía desde el negro y café rojizo (Lado

dorsal mas oscuro) hasta café claro con áreas oscuras en el lado dorsal cerca

del ápice. La genitalia del macho varía desde negro a rojizo. El abdomen apa-

rentemente pierde algo de pilosidad en los individuos de mas edad, luciéndo ro-

jizo, en un tono semejante a las áreas rojizas del mesonotum.

ORATOEBESTES: Ei

Cratolestes Hull, 1962, pp. 483 - 484.

TYPO DEL GENERO: Erax chiliensis Macquart 1850, como Asilus spectabilis

Philippi 1865, por designación original.

Cabeza en vista frontal un - quinto mas ancha que alta; vertex profundamen-

te hundido; ocellarium bien desarrollado, ocelos grandes. Cabeza en vista lateral:

área postocular un - séptimo del ancho del ojo; giba facial bien desarro'lada,

ocupando tres - cuartos de la cara; antenas largas, segundo segmento de la mitad

del largo del primero; tercer segmento atenuado hacia el ápice, ligeramente com-

primido, con un largo stylo el cual es una - y - media vez el largo del tercer seg-

mento y posee una corta espina en el ápice; mystax abundante, largo. Mesonotum

con líneas centrales y manchas laterales; vestidura de abundantes peios cortos en

frente a la sutura transversa, mas largos y densos detrás de la sutura; cerdas dor-

socentrales bien definidas. Costados del postmesonotum con micropubescencia, sin

pelos. Celdas marginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas; R, angulada en

la base, con un vestigio de vena trunca a menudo presente; R, y R;, alcanzan

el borde del ala antes del ápice; celda anal cerrada, con un corto pedicelo; M,

curvada, formando un ángulo de 909 - 1000 con m. Espinas de las tibias anteriores

ausentes. Abdomen mas o menos cilindrico en los machos, cuneiforme en las

hembras. Alas ligeramente mas largas que el abdomen. Genitalia del macho gran-

de, claviforme, no rotada, algumas veces formando un ángulo de 909 con el

abdomen; hypandrium corto, dejando la cavidad genital abierta; epandrium gran-

de, con hendiduras en el ápice; gonopodos cortos, bulbosos. Hembras con el ovi-

positor puntudo, mas o menos comprimido, con o sin deminutas espinas en los

cercos; sin espinas en los acanthophorites.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 2 especies.

De acuerdo con la descripción hecha por Hull de este género, las hembras

de esta especie solo tienen “stiff setae” en el ovipositor. En este trabajo se ha en-

contrado que luego de aclarar el ovipositor, se observan 5 espinas diminutas en

cada cerco en €. chiliensis (Macquart) (Fig. 230). La ausencia de estas espinas en

los cercos es una característica de la nueva especie C. wirthi.

Las dos profundas hend“duras en los epandria (Fig. 227) son características

solo de C. chiliensis; C. wirthi tiene solo una suave hendidura en el borde pos-

terior de los epandria (Fig. 234). Las estructuras restantes son similares, incluso

la funda del pene (Figs. 228 y 233).

As.lus spectabilis Philippi, designado como typo del género es sinónimo de

Erax chiliensis Macquart.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE, CRATOLESTES

E Epandria con una suave hendidura en el borde posterior, y un

hendidura de más arriba, se extiende hasta la mitad del largo

dei epandrium (Fig. 227); hembras con por lo menos 5 espinas

dímmnutas. enfeadar cercos (Pres “ZOOND3 E) reia

ce Epandria con dos profundas hendiduras en el borde distal, la

proceso en forma de gancho en la parte dorsal del ápice

(Fig. 234); hembra sin espinas en los cercos, solo pelos cortos

SEN o e A ct OTAN C. wirthi n. sp.

Cratolestes chiliensis (Macquart) n. comb.

(Figs. 227, 231, 439)

Erax chiliensis Macquart, 1850, p. 85, Pl. 8, fig. 5, Chile; Blanchard, 1852, p.

369; Philippi, 1865, p. 692.

Nerax chiliensis (Macquart). Hull, 1962, p. 478.

Asilus spectabilis Philippi, 1865, p. 695, Santiago, Illapel; Stuardo, 1946, p. 85.

Cratolestes spectabilis (Philippi). Hull, 1962, p. 483, figs. 360, 749, 1438, 1447,

2178, 2204, 2455 y 2469.

Erax albescens Sch'ner, 1868, p. 180, Chile.

Lochmorhynchus albescens (Schiner). Stuardo, 1946, p. 84.

Nerax albescens (Schiner). Hull, 1962, p. 478.

Erax perniger Schiner, 1868, p. 180; Stuardo, 1946, p. 84, Chile.

Nerax perniger (Schiner). Hull, 1962, p. 478.

TYPO: G, Chile, en el Museum National d'Histoire Naturelle, Paris (no

visto). Cotypos de A. spectabilis, 1 y 19 en el Museo Nacional de Historia

Natural, Santiago, sin localidad (vistos). Typo de E. albescens, 13, Chile, en el

Naturhistorisches Museum, Wien, Austria (visto). Typo de E. perniger, 19, Chi-

le, localidad desconocida (no visto).

— 265 —

DIAGNOSIS. Cuerpo gris, abdomen en su mayor parte blanquecino, tergites

2-5 con grandes áreas negras en el dorso; mystax blanco; patas negras; epandria

con dos grandes hendiduras, la de mas arriba ocupa casi la mitad del epandrium;

ovipositor con 5 espinas diminutas en cada cerco.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara, frente y vertex con densa micropu-

bescencia gris, menos densa entre el ocellarium y las antenas; pelos frontales blan-

cos, con lo 2 pelos cerdosos negros entremezclados; ocellarium gris, ocelos amari-

llos; cerdas ocelares negras y blancas entremezcladas, las cerdas negras ligeramente

más gruesas. Cabeza en vista lateral: giba facial gris, mystax de pelos blancos

uniformes; antenas negras, primer y segundo segmentos con pelos cortos, finos

y blancos; barba blanca; área postocular gris, con finos pelos blancos, una serie

de débiles cerdas negras en la parte posterior del borde de los ojos; cerdas occi-

pitales cortas o de tamaño moderado, negras, ubicadas a cada lado del vetex;

proboscis negra con finos pelos blancos en la parte basoventral, pelos cortos fi-

nos y blancos en el ápice; palpos maxilares negros con finos pelos blancos en la

base y pelos negros, mas gruesos en la parte distal. Protórax uniformemente cu-

bierto con fina micropubescencia gris y finos pelos blancos cerdas del collar ra-

las, finas, negras, entremezcladas con pelos blancos. Pleura torácica casi siempre

uniformemente cubierta con micropubescencia gris y finos pelos blancos dispersos,

algunas veces hay unos pocos pelos negros en la mesopleura; cerdas mesepimera!es

negras y blancas, entremezcladas con finos pelos blancos. Costados del postmesono-

tum con micropubescencia gris. Mesonotum negro con micropubescencia gris dis-

persa; vestidura de cortos pelos negros dispersos, los cuales son mas largos en el

área posterocentral, unos pocos pelos blancos a lo largo de los bordes; scutellum

semejante en color y vestidura al área posterocentral del mesonotum; 2 cerdas

notopleurales negras; 1 cerda intraalar negra; 2 - 3 cerdas postalares negras; cerdas

scuteliares abundantes, similares a las abundantes cerdas de la parte posterior

del mesonotum. Alas (Fig. 229) hyalinas, venas café oscuras. Coxas uniformemente

cubiertas de micropubescencia gris, vestidura de pelos blancos y unas pocas cer-

das en su mayoría blancas, algunas son negras, los pelos son más densos y largos

en la parte anterior de las coxas anteriores; fémures, tibias y tarsos negros, con

cortos pelos blancos dispersos, umos pocos pelos largos en el lado ventral de los

fémures; cerdas negras; tarsos algunas veces ligeramente negro rojizo. Uñas ne-

gras, cuarto basal rojizo. Abdomen cubierto con micropubescencia gris, tergites

2-5 negros en el dorso; vestidura del abdomen de pelos blancos, los cuales son

mas largos en los costados de los tergites, esto es mas definido en los tergites

1-4; unas pocas cerdas negras en los costados del tergite primero. Genitalia ne-

gra (Fig. 227), epandria grande, con dos grandes hendiduras en el borde distal,

la superior ocupa casi la mitad distal del epandrium; gonopodos cortos, 1/3 del

largo de los epandria; funda del pene como en el Fig. 228.

— 266 —

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor cónico, ligeramente comprimido,

incluyendo el segmento 8, el cual es glabro, café roj'zo; ápice del ovipositor

cen 5 pequeñas espinas en cada cerco. algunas veces solo visibles después de acla-

Tar (Elgs: 230,231).

MEDIDAS. Largo total 15.0 -20 mm, promedio 18.3 mm; largo de ala 11.2 -

15.6 mm, promedio 13.8 mm; ancho de ala 2.9 - 4.4 mm, promedio 3.9 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 37% y 379. ACONCAGUA: 192 10 km. E. of

Papudo, Nov. 27, 1950, R. £ M. (CAS). ANTOFAGASTA: 13 Mare, Toconao, An-

tofagasta, Dic., 1952, F. Soza (INCO). BIO B1O: 19 Santa Clara, Dic. 8, 1965, F.

Mendez (INCO). CONCEPCION: 1% 129 Concepción, Nov. 25, 1962, Mendez

(INCO); 19 Concepción, Dic. 18, 1961, Mendez (INCO); 19 Concepción,

Bnes6; 1962, Mendez (INGO). CAU'TIN: 1 20 Km. E. of Temuco, - Ene 7

1951 (CAS). COQUIMBO: 13 Coquimbo, Nov. 3-5, 1961, Peña (INCO); 19

Coquimbo, Feb. 7, 1956, H. Carmona (CEE); 13% Estero Canela, Puerto Oscuro,

Coquimbo, Oct. 24, 1961, Peña (OT'T); 19 12 mi. E. of Rivadavia, Coquimbo,

Dic. 4, 1950, R. £ M. (CAS); 17 Huintil, Illapel, Nov. 25, 1959, Peña (INCO);

1 19 (gen. prep.) Rivadavia, Elqui, Coquimbo, Nov. 24-26, 1946, L. E. Pe-

ña (INCO). MALLECO: 129 Angol, Nov. 29, 1960, E. Sedano (INCO); 1¿G

oran! Dic. 2, 1956, 0. Fetis (INCO); 1:09 Angol, Dic..4, :1934,.R. Castillo

(AMNHB); 12 Angol, Dic. 22, 1929 (USNM); 1 Angol, Dic. 8, 1956, J. Gar

cía (MICH); 13 Ango!, Dic. 3, 1956, C. Saez (MICH); 13% Angol, Nov. 29,

1958, H. Romero (MICH); 1 Angol, Nov. 28, 1962, O. Yagi (MICH); 19

oc 6, 1997, ,F. Vallejos (MICH); 19 Angol, Dic. 8, 1956, ].. Games

(MICH); 19 Angol, Nov. 25, 1962, L. Carvaste (MICH); 1 Angol, Nov. 1,

1959, C. Caba (MICH); 4 Nahuelbuta, Angol, Nov. 25, 1962, Cekalovic - Fe-

tis (INCO); 19 Nahuelbuta, Dic. 5, 1962, L. Carvaste (INCO); 13% Angol, Dic.

8, 1956, J. Cea (INCO). MAULE: 1 Chovellen, Maule, Dic. 5, 1953, L. E. Pe-

ña (OUT); 23 Las Canas, Maule, Nov. 28, 1953, L. E. Peña (USNM); 19

Péllubue, Maule, Dic. 2, 1953, L. E. Peña (OT T). ÑNUBLE: 1. Chillán, Ñu-

ble, Oct. 9, 1964, M. Mellado (INCO); 17 40 km. E. of San Carlos, Ñuble, Dic.

23, 1950 R. £ M. (CAS(; 19 San Carlos, Rio Nuble,- Dic, 941955; JOTA E

(INCO). SANTIAGO: 1¿Z (gen. prep.) 19 Aculeo, Santiago, Nov. 3-7, 1959,

Peña (INCO); 13 Maipú, F. V. Ibarra (INCO); 27 12% Pudahuel, Dic. 1953,

L. Peña (BRAS); 19 Peñaflor, Nov. 29, A. Faz (USNM); 17 N0 25 19 NO 24

Santiago, Dic., 1933, F. Ruiz (USNM); 1 San Cristobal, Santiago, T. Ramírez

(INCO); 19 Santiago, C. E. Porter (INCO); 12 Santiago, Oct., 1944, L. E.

Peña (INCO). VALPARAISO: 13 Limache, Dic. 9, A. Faz (AMNH); 1 Pe-

ñuelas, Oct. 12, 1952 (INCO); 19 Peñuelas, Oct. 12, 1952 (INCO); 192 NQ 80

Perales, Dic. 25 (INCO); 1 19 N0 9 Valparaíso, A. Faz (CORN); 1 9 N0 9

Valparaíso, A. Faz (INCO). Localidad incierta: 1% Queronque, Dic., 1939, Dr.

Reed (CAS); 12 15 mi. W. of La Junta, Dic. 7, 1950 R. £ M. (CAS). Sin lo-

— 267 —

calidad ni fecha: 13 Chile, E. P. Reed (INCO); 19 Chile Central, 1892 - 1938,

P. Germain (INCO); 1 (gen. prep.) Chile, :A. Faz (INGO);-1G “NO 60745;

Chile, 1923 (BRAS); 19 Chile, E. P. Reed (GAS); 1:09 (typo:de' E: “albescens)

Chili (WIEN); 1g C. Chile, A. Faz (USNM); 19 (JIM); 1g 19 (cotypos

de A. spectabilis) (JIM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 239.

DISCUSIÓN. Los pelos de la cabeza, principalmente el mystax, varían de

blanco a amarillos. Los especimenes engrasados lucen negros en las partes en que

existe micropubescencia gris. La genitalia de los machos puede presentarse alineada

con el abdomen o formando un ángulo de 90% con él.

Cratolestes wirthi n. sp.

(Elgs. 2322395 42110)

TYPO: ¿Z, Rio Azapa, Arica, Nov. 2, 1952, L. E. Peña; este especimen está

depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Similar a C. chiliensis, del cual puede separarse por la forma de

los epandria, en los cuales faltan las profundas hendiduras del borde, y por

poseer procesos en forma de gancho en la parte posterodorsal; hembras sin pe-

queñas espinas en los cercos.

DESCRIPCION DEL TYPO (£G'). Cabeza en vista frontal: cara, frente, vertex

y ocellarium cubiertos de micropubescencia blanquecina, mas rala entre el ocella- .

rium y las antenas; pelos frontales blancos, semejantes a los pelos del ocellarium

y los de la parte superior del mystax; ocelos amarillos; cerdas ocelares mo dife-

renciadas del resto de los pelos. Cabeza en vista lateral (Fig. 232): giba facial

plateada; mystax de 7 pares de gruesas cerdas largas en el borde oral, cerdas del

centro, 1-3 en cada lado negras, pelos blancos sobre toda la giba facial, entre-

mezclados con unas pocas cerdas negras en la parte superior; antenas negras, pri-

mer y segundo segmentos con corto pelo blanco, en el tercer segmento micropu-

bescencia plateada; barba abundante de pelos finamente plumosos; área postocu-

lar con micropubescencia gris, a lo largo del borde posterior de los ojos es blan-

ca, vestidura de fimos pelos blancos; 10 gruesas cerdas occipitales negras en cada

lado del vertex; proboscis negra, con pelos largos y finos, blancos, en la parte

basoventral y pelos cortos amarillos en el ápice; palpos maxilares con pelos blan-

cos en la base y pelos negros mas largos en el extremo. Protórax uniformemente

cubierto con micropubescencia plateada y pelos largos, finos, ralos. Cerdas del co-

llar blancas. Pleura torácica con micropubescencia plateada y pelos largos, finos

y blancos, varios pelos mas gruesos en el borde superior de la mesopleura; cer-

— 268 —

das mesepimerales blancas, con algunas cerdas negras entremezcladas. Mesono-

tum cubierto desuniformemente con micropubescencia gris, menos densa en las

líneas centrales y en las manchas latera/es, en el borde posterior hay pelos cortos,

negros, dispersos, algunos mas largos que los que se encuentran sobre el centro

del mesonotum, pelos blancos a lo largo de los bordes laterales; 4 cortas cerdas

negras en los callos humerales; scutellum con pelos finos blancos, dispersos y unos

pocos pelos negros entremezclados; 2 cerdas notopleurales negras; 1 cerda intra:

alar negra; 2 cerdas postalares negras; 7 pares de finas cerdas scutellares, largas

v negras. Costados del postmesonotum con micropubescencia plateada desunifor-

memente distribuida. Alas hyalinas, venas café oscuras. Coxas de covertura seme-

jante a la de la pleura toráccica, con pelos y unas pocas cerdas blancas, los

pelos son mas abundantes en la parte frontal de las coxas anteriores; fémures

negros con abundantes pelos blancos; tibias ytarsos café rojizos, semejantes en

vestidura a los fémures; cerdas de las patas negras. Uñas negras. Sternites, tergi-

tes 6 y 7 y borde posterior de los tergites 1-4 con densa micropubescencia pla-

teada; vestidura del abdomen blanca, largos pelos en los tergites 1-3 y en los

sternites. Genitalia negra (Fig. 234), epandria con un proceso delgado en forma

de gancho en la parte posterodorsal, vestidura de ralos pelos blancos y una fila

de cerdas blancas en el centro; gonopodos cortos con largas cerdas negras en la

parte ventral; funda del pene según se ilustra en Fig. 233.

HEMBRA. Similar al macho; ovipositor cónico (Fig. 235), ligeramente compri-

mido, incluye el segmento 8, el cual es glabroso, brillante, negro; cercos con fi-

nos pelos cortos amarillos; tergites 1-6 con los bordes laterales y posterior den-

samente cubiertos de micropubescencia plateada; pelos de los tergites 1-3 menos

abundantes y más cortos que en los machos.

Esta especie es dedicada al Dr. W. W. Wirth, Curador de Diptera del U. S.

National Museum.

MEDIDAS. Largo total 16.5 - 22.0 mm, promedio 20.2 mm. [typo 18.5 mm.);

largo de ala 13.2-16.1 mm., promedio 14.8 mm. [typo 13.1 mm.]; ancho de ala

3.3 - 4.6 mm., promedio 4.0 mm. [typo 3.9 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 153 y 79% ANTOFAGASTA: 13 Camar, To-

conao, Antofagasta, 2700 m., Feb. 30, 1954, F. Soza (INCO); 13 Laguna Colorada,

límite Antofagasta, Dic. 5, 1959, Inst. Pedagógico (CEE); 2% 19 San Pedro de

Atacama, Feb. 20-25, 1960, Peña (INCO). COQUIMBO: 19 Paichamo, near

Elqui, Nov. Dr. R. Gajardo (PAR). TARAPACA: 3¿G [typo] Rio Azapa, Arica,

NOV 2 19DZ, LE. Pena (INCO); 3 0. de Tana, Tarapaca, Nov. 5, 1997. É:

E, Peña (3 OTT, 1 INCO); 17 19 Camarones, Tarapacá, Nov. 18-30, 1952,

L. E. Peña (INCO); 23 Chaca, Tarapacá, Nov. 5, 1955, L. E. Peña (OTT);

13 Miñi - Miñi, Arica, 1650 m., Feb. 15, 1948 (INCO); 1 19 Miñi - Miñi, Feb.

14, 1948, J. Herrera (USNM).

— 269 —

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Mustrada en Fig. 421.

DISCUSION. Los machos de esta especie se pueden separar de la otra especie

de Cratolestes solo por la forma del epandríum y por la presencia de un gan-

cho en el lado posterodorsal del epandrium; las hembras pueden separarse por

el ovipositor, carente de pequeñas espinas en los cercos, este carácter solo puede

observarse con seguridad lugo de aclarar ei especimen. Las cerdas del collar va-

rían en color de blanco a negro; también es variable el color de la micropubes-

cencia del mesonoto, la cual puede ser gris o dorada oscura.

CRATOPODA=Elall

Cratopoda Hull, 1962, pp. 575-576.

TYPO DEL GENERO: Asilus helix Bromley, 1935; este es una enmendación a la

designación original de Asilus gayi Macquart por Hull (ver discusión de Cratopoda

helix (Bromley).

Cabeza en vista frontal un - quinto mas ancha que alta; vertex moderada-

mente hundido; ocellarium grande, ocelos grandes. Cabeza en vista lateral: área

postocular de un - tercio del ancho del ojo; gibosidad facial fuertemente desarro-

llada, ocupando cinco - sextos de la cara; antenas largas, primer segmento una

y media vez el largo del segundo; tercer segmento ligeramente compr'mido, ate-

nuado hacia el ápice, con un corto y angosto microsegmento apical que lleva en

el ápice un largo styzo más o menos aplastado, ligeramente torcido y agudo en

el ápice; primer segmento antenal con 2-4 cerdas gruesas que nacen desde la

parte ventral y alcanzan la mitad del tercer segmento; mystax abundante, denso,

limitado a la parte anterior de la giba facial y continuado a lo largo de los la:

dos de! borde oral, pelos de la mitad super'or, mas cortos que los de la mitad

inferior. Mesonotum con líneas centrales y manchas laterales bien definidas; ves

tUdura de pelos de tamaño mediano los cuales son mas densos a lo largo de la

línea media; área posterocentral con pelos setiformes entremezclados con pelos

lanosos, finos, finamente plumosos; 13-16 pares de cerdas dorsocentrales forman

una fila antes de la sutura transversa y tres filas detrás de la sutura. Scutellum

cubierto de pelos lanosos ordenados en dos densos mechones dirigidos hacia afue-

ra, dejando un espacio desnudo entre ellos; 1-3 pares de cerdas scutelares.

Costados del postmesonotum con largos pelos lanosos semejantes a los del scute-

llum. Celdas marginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas; bifurcación en

R A casi simétrica; R, alcanza el borde del ala antes del ápice, R;, lo alcanza

después del ápice; celda anal cerrada cerca del borde del ala, con un corto pe-

dice:o; M, y m forman un angulo de 1200. Espina de las tibias anteriores ausen-

te. Abdomen mas bien cilindrico en los machos, l'geramente comprimido y pun-

— 270 —

tudo en las hembras. Alas corrientemente no se extienden mas allá del extremo

del abdomen. Genitalia masculina en forma de una cuenta, grande, no rotada;

hypandrium corto, puntudo; epandria en forma de forceps, dilatados, doblados

hacia la línea media (Fig. 237 y 246); gonopodos cortos, terminando en un pro-

ceso puntudo; funda del pene termina en un elaborada estructura en forma de

tridente (Figs. 239 y 243). Hembra con el ovipositor corto, puntudo, sin espinas.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 2 especies.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE CRATOPODA

L. Mystax negro en la parte superior, amarillo en la parte inferior;

borde posteroventral de los epandria con 3 pequeñas muescas

que forman 2 pequeños lóbulos entre ellas; bordes ventrales

de los gonopodos convexos, con 12 - 15 gruesas cerdas amarillas

(Fig. 246); hembras a menudo con pelos blancos o amarillos

en los sternites 6 y 7; sternites 8 como en las Figs. 11, 12 y

A A A E C. helix (Bromley)

144 Mystax en general negro, con unas pocas cerdas amarillas entre-

mezcladas en el centro; borde posteroventral de los epandria

con una gran emarginación poco profunda; cara ventral de los

gonopodos más bien plana, con 3-5 gruesas cerdas amarillas

(Fig. 237); hembras en su mayoría con pelos negros en los ster-

nites 6 y 7, sternite 8 según ilustración en Figs. 240 y 241

ci A A A O A O O

Cratopoda emarginata mn. sp.

(Figs. 236 - 241)

TYPO. GZ, de El Radal Cordillera Talca, 900 - 1100 m., Nov. 23-30, 1957,

L. E. Peña; este especimen está depositado en el Departamento de Zoología,

Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a C. helix, del cual puede ser separado por tener una

sola emarginación poco profunda en el borde posteroventral de los epandria y la

parte ventral de los gonopodos es mas bien plana y solo con 3-5 cerdas grue-

sas amarillas; las hembras poseen pelos en su mayoría negros en los sternites

6 y 7, el sternite 8 según Figs. 240 y 241.

— 271. —

DESCRIPCION DEL TYPO (G). Cabeza en vista frontal; cara con densa mi-

cropubescencia plateada, menos densa en el dorso de la giba facial; frente y vertex

en su mayoría negra con poco definida micropubescencia plateada rala; primer

segmento con unos pocos pelos cortos blancos y 4 largas cerdas negras gruesas

en la parte ventral, segundo segmento con cortos pelos blancos y negros; barba

blanca; área postocular con micropubescencia plateada y amarilla, vestidura de

pelos finos largos y blancos, que son mas densos detrás del vertex; cerdas posto-

culares amarillas; 8 cerdas occipitales negras ordenadas en filas a cada lado del

vertex; proboscis negra con finos pelos largos blancos en el lado posteroventral

y pelos cortos amarillos en el ápice; palpos maxilares negros con pelos negros en

el ápice; palpos maxilares negros, pelos largos negros en la mitad apical, pelos

bancos en la mitad basal, en parte entremezclados. Protórax negro, desuniforme-

mente cubierto de micropubescencia plateada y dorada, pelos blancos finos blan-

cos; cerdas dei collar amarillas. Pleura torácc:ca negra, desuniformemente cubierta

de micropubescencia dorada y plateada y unos pocos pelos largos finos y blan-

cos; cerdas mesepimerales largas, finas, amarillas. Mesonotum con densa micropu-

bescencia dorada en los tres - cuartos anteriores, el cuarto posterior y los callos

humerales con micropubescencia plateada excepto en partes de las líneas centra-

les y las manchas laterales; vestidura de pelos negros de tamaño medio a largo

a lo largo de la línea media, mas largos en el área posterocentral, el resto del

mesonotum con unos pocos pelos cortos, y finos y blancos cerca de los bordes;

scutellum con micropubescencia plateada y pelos blancos; 10 cerdas dorsocentra-

¿es negras, unas pucas cerdas y pelos de largo semejante a cada lado de las dorso-

centrales; 3 cerdas notopleurales amar llas; 3 cerdas intraalares negras; 3 cerdas

postal: res negras; 2 pares de cerdas scutellares negras. Costados del postmesonotum

zon micropubescencia plateada y un denso mechón de finos pelos blancos. Alas -

hyalinas, ligeramente fumosas en el ápice. Coxas semejantes en covertura a las

ple ras torácicas, pelos y cerdas blancas con unos pelos gruesos entremez-

clados, principalmente en las coxas frontales y medianas; fémures negros con pe-

los F'nos y blancos, mas largos en los fémures anteriores, mas cortos y deprimidos

en los fémures posteriores; tibias rojizas, negras cerca del ápice, vestidura de cor-

tos peos deprimidos, blancos en las tibias anteriores, negros en las posteriores y

entremezclados en las tibias medianas; tarsos negros, vestidura semejante a la de

las tibias posteriores; cerdas de las patas en su mayoría blancas; cerdas en el

lado ventral de las tibias medianas y frontales y en la parte anterior de las tibias

frontales, negras. Abdomen con micropubescencia gris oscura; una ancha línea

café en el dorso de los tergites, aproximadamente del mismo ancho en todos los

tergites; vestidura de pelos cortos dispersos, negros en el dorso de los tergites y

blancos en los costados de los tergites, mas largos en los costados de los tergites

1-3 y en los sternites; cerdas de los lados de los tergites y de los sternites de co-

lor amarillo claro. Genitalia (Figs. 236, 237), negra, rojiza en parte, pelos y cer-

d.s amarillas; bordes posteroventrales de los epandria con una emarginación ex-

tensa y poco profunda; lado ventral de los gonopodos mas bien planos, con

3-5 gruesas cerdas amarillas; funda del pene como en las Figs. 238 y 239.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor como en las Figs. 240 y 241; ster-

nites 6 y 7 con pelos negros, unos pocos pe-os blancos entremezclados; pelos cortos

y amarillos en los cercos; sternite 8 según las ilustraciones.

El nombre emarginata hace referencia a la emarginación del borde postero-

ventral de los epandria.

MEDIDAS. Largo total 13.2 - 17.8 mm., promedio 15.1 mm. (typo 17.8 mm];

largo de ala 10.1- 14.6 mm., promedio 13.6 mm. [typo 14.6 mm.]; ancho de ala

3.0 -4.1 mm., promedio 3.6 mm. [typo 4.1 mm].

MATERIAL EXAMINADO. 8£ y 179.BIO BIO: 192 Bio Bio, El Abanico,

Dic. 31, 1950, R £ M. (USNM). LINARES: 13 19 Cord. Parral, Dic., 1956, Peña

(INCO); 19 Fdo. El Castillo, Cord. Parral, Dic. 13, 1964, Peña (INCO); 29

Fdo. Malcho, Parral, Linares, Nov. 2-5, 1960, Peña (OTT); 29 Fdo. Malcho,

Parral, Nov. 11-20, 1954, Peña (12 INCO, 12 USNM); 137 Las Cruces, Cor-

diliera Parral, Nov. 11-25, 1960, Peña (INCO); 22 Romehual, Cord. Parral,

TT); 19 Villegas, Parral, Linares,Nov. 5-10, 1960, Peña (12 INCO, 19 O

Oct. 27-30, 1960, Peña (OTI). MALLECO: 129 Cerros de Nahuelbuta, An-

gol, 700 m, Nov. 27, 1936, D. S. Bullock (USNM); 13 Lonquimay, Malleco, Dic.

9-10, 1963, L. E. Peña (INCO); 17 Malleco, Dic. 9, 1959, Peña (INCO); 13 (gen.

prep.) 49 Pehuenco, Dic.. 16, 1963, L. E. Peña (3 INCO); CAS). ÑNUBLE:

13 (gen. prep.) Las Cabras, Ñuble, 1100 - 1400 m, Ene. 16-29, 1955, L. E. Peña

(BRAS). Talca: 1% 12 [typo] El Radal, Cor. "Paica, 900 - 1100 m, Nov. 23 - 30,

1957, L. E. Peña (INCO). Argentina: 1% Pucará, Lago Lacar, “Treuquen, Dic.

12, 1950 (INCO). Sin localidad ni fecha: 19 (JUM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 455.

DISCUSION. Las hembras son dificiles de separar de las hembras de C. helix;

el color de los pelos del mystax y de los sternites 6 y 7, según indicados en la

clave, pueden ser útiles en la mayoría de los casos; es necesario aclarar el extre-

mo del abdomen para estudiar el sternite 8 y compararlo con la f gura 241.

Una 9 de la colección J. T. Medina tiene una etiqueta manuscrita de Phi-

lippi del siguiente tenor: “Asilus eriopettis Ph. n. sp.”; este es un nomen nudum.

Cratopoda helix (Bromley) n. comb.

(Figs. 1-12, 242-247, 483)

Ásilus helix Bromley, 1935, p. 110. CG. Chile, Concepción, Pudahuel, Marica;

Stuardo, 1946, p. 85; Hull, 1962, p. 545.

—213—

Cratopoda gayi (Macquart), sensu Hull, nec Macquart 1838. Hull, 1962 pp. 575 -

576, figs. 396, 737, 1527, 1536, 2227, 2430 y 2454 (como typo de Cratopoda).

TYPO. ¿Z,C. Chile, A. Faz, en el United States National Museum (no visto).

Un ¿Z paratypo de Pudahuel, Nov. 9, 1921, A. Faz (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo desuniformemente cubierto con micropubescencia pla-

teada y dorada; borde ventral de los epandria con 3 pequeñas emarginaduras; lado

ventral de los gonopodos convexos, con 12 - 15 cerdas amarillas (Fig. 246); sternites

6 y7 de las hembras con cerdas blancas.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara, frente y vertes con densa micropubes-

cencia plateada, micropubescencia dorada en la parte inferior de la cara; pelos

frontales finos, negros, dispersos; ocelos rojizos; cerdas ocelares finas, negras, di-

vergentes desde el centro. Cabeza en vista lateral (Fig. 1): giba facial plateada,

dorada en el borde inferior; mystax de gruesas cerdas blancas en la parte baja

y central, cerdas mas finas y negras en la parte superior; antenas negras brillan-

tes con micropubescencia plateada rala y pelos blancos y negros en el primer y

segundo segmentos, tercer segmento con micropubescencia café oscura; barba de

fino pelo blanco; área postocular (Fig. 2) con micropubescencia plateada y dora-

da y finos pelos largos blancos, mas abundantes detrás del vertex; cerdas postocu-

lares amarillas; cerdas occipitales ordenadas en una fila a cada lado del vertex;

proboscis negra con finos pelos largos blancos en la parte basoventral y cortos

pelos amarillos en el ápice. Protórax (Fig. 3) negrusco con micropubescencia

plateada dispersa y finos pelos largos blancos; cerdas del collar amarillas. Mesono-

tum (Fig. 4) cubierto de micropubescencia dorada en los tres - cuartos anteriores

y plateada en el cuarto posterior, excepto sobre las líneas centrales y sobre las

manchas laterales y en una pequeña área detrás de los callos humerales, las cua-

les lucen café oscuras; vestidura, de abundantes pelos negros de tamaño mediano

a lo largo de la línea media, pelos cortos negros dispersos en los costados y pelos

finos blancos en los callos posteriores y en el área posterocentral; scutellum con

micropubescencia plateada y pelos blancos; 13-16 cerdas dorsocentrales negras;

2-3 cerdas notopleurales amarillas; 3 cerdas intraalares amarillas; 3 cerdas posta-

lares amarillas; 1 par de cerdas scutelares corrientemente negras. Costados del

postmesonotum con micropubescencia plateada y un mechón de finos pelos blan-

cos. Alas (Fig. 247) hyalinas, ligeramente fumosas en el extremo. Coxas de cover-

tura semejante a la de las pleuras torácicas, pelos y cerdas blancas, menos

abundantes en las coxas posteriores; fémures negros con finos pelos, cortos, de-

primidos, algunos mas largos en la parte basoventral de los fémures anteriores;

tibia roja, negra cerca del ápice, pelos semejantes a los de los fémures; tarsos

negros; cerdas de las patas en su mayoría blancas; cerdas del lado ventral de los

fémures medianos y anteriores y en el lado anterior de las tibias frontales, negras.

Uñas negras, cuarto basal rojo. Abdomen (Fig. 4, 6 y 7) con micropubescencia

— 274 —

€

gris y una bien definida banda longitudinal café en el centro de los tergites, mas

ancha en los tergites basales y mas delgada hacia el extremo; vestidura de corto

pelos negros dispersos en el lado doral de lo tergites, los pelos de los costados

de los tergites y los de los stern:tes son amarillos y corrientemente mas largos;

cerdas en los costados de los tergites y sobre los sternites gruesas, amarillas. Geni-

talia (Figs. 8 - 10) negra, en parte rojiza, pelos y cerdas amarillas; borde postero-

ventral de los epandria con tres pequeñas emarginaduras que forman dos peque-

ños lobulos entre ellas (Fig. 242); superficie ventral de los gonopodos convexa

con 12-15 gruesas cerdas amariilas (Fig. 246); funda del pene como en la Fig.

243 y 244).

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor corto, puntudo F'gs. 11, 12, 245);

sternites 6 y 7 con pelos en su mayoría blancos; sternite 8 según ilustración en

Fe. 12:

MEDIDAS. Largo total 14.5 - 19.2 mm, promedio 16.2 mm; largo de ala 9.7 -

15.2 mm, promedio 13.5 mm; ancho de ala 2.8-4.4 mm, promedio 3.1 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 133 Z y 1459. ACONCAGUA: 192 C. Alica-

gue, Aconcagua, Nov. 15, 1956. Peña (INCO); 32 Huaquen, Aconcagua, Nov.

22-24, 1961, Peña (INCO); 1G Piscicultura R. Blanco, Aconcagua, 1600 m,

Ene. 1-31, 1964, L. E. Peña (INCO). ARAUCO: 437 39 Caramavida, Arauco,

Diex31, 1953, L.. E. Peña (2.9 ¿INCO);,.1.9. 43 OTE); 1 -Contulmo, ¿Nom

28, 1904, Schonemann S. (Beri); 3% Contulmo, Dic. 2, 1904 Schonemann S.

(BERL); 13 Contu:mo, Dic. 17, 1903, Schonemann S. (BERL); 1% Contulmo,

Nov. 20, 1903, Schonemann S (BERL); 12 Contulmo, Nov. 29, 1903, Schonemann

S. (BERL); 1 (gen. miss.) Contulmo, Dic. 8, 1903, Schonemann S. (BERL);

13 129 Contulmo, Feb. 8, 1904, Achonemann S. (BERL); 1gZ 29 Contulmo,

Dic. 8. 1903, Schonemann S. (BERL); 194 Contulmo, Dic. 20, 1904, Schone-

mann S. (BERL); 12 Contulmo, Nov. 7, 1904, Schonemann S. (BERL); 192

Contulmo, Nov. 2, 1903, Schonemann S. (BERL); 12 Contulmo, Nov. 2, 1903,

Schonemann S. (BERL); 1 (gen. miss.) Contulmo (BERL); 17 L. Lanalhue,

Dic. 4, 1963, Schauser (INCO); 23 29 Peillem Pilli, Cord. Nahuelbuta, 600 m.

'AKauco, Ene. 13, 1954. L. Peña (OTE). BIO BIO: 1 Bio: Bio, E. CC... Reed

(USNM); 47 49 El Abanico, Bio Bio, Dic. 30, 1950, R. £% M. (CAS); 39

Santa Clara, Nov. 1, 1964, Mendez (INCO). CAUTIN: 12 Pucon, Nov. 20 - 24,

1940, P. Q. Berry (USNM); 3g Radal, Nov. 28-30, 1957. Peña (INCO); 12

Temuco, Ene. 1908, P. Herbst (CAS); 17 42 20 km. E. of Temuco, Ene. 7,

1951, R. £ M. (CAS). CONCEPCION: 23 Concepción, 1904, P. Herbst (CAS);

32 Concepción, Nov. 17, 1958, Catalán (INCO); 29 Concepción, Nov. 29,

1957, Brito (INCO); 1% N% 1117, Concepción, Dic. 9, 1958, Vaccaro (INCO);

1g 1157, Concepción, Dic. 30, 1955, Alister (INCO); 1 N9 1147, Desemboca-

dura, Nov. 30, 1955, L. Aguayo (INCO); 1% San Pedro, Nov. 24, 1956, Cid

215 —

(INCO; 19 San Pedro, Dic. 12, 1957, J. O. R. (INCO); 12 San Pedro, Nov.

24, 1956, Gid (INCO); 19 - San Pedro, Dic. 3, 1956, Cid. (INCO); 19 Rafael

Dic. 6, 1959, Rodrigo (INCO); 17 Yumbel, Nov. 26, 1956, Cid (INCO).

COQUIMBO: 13 Hda. Illapel, Coquimbo, 600 m, Nov. 1-7 ,1954, L. E. Peña

(BRAS); 13 Hda. Mlapel, Coquimbo, 900 - 1200 m, Oct. 22-30, 1954, L. E. Peña

(BRAS); 1 Los Maitenes, Coquimbo, 1200 - 1400 m, Nov. 15-17, 1954, L. E.

Peña (BRAS); 43 32 Los Molles, Ovalle, Coquimbo, Oct. 22, 1961, L. E. Peña

(QTT); E9-50'mi. S. of Ovalle, Dic. "1, “1950; KR. M. (CAS) GURICO=4TéS

Curicó, Cord., Feb. 9, 1961, Peña (INCO); 2 Cord. Curicó, Feb. 9, 1961

(INCO); 1 129 Estero La Jaula, Los Queñes, Curicó, Ene. 4-18, 1964, L. E.

Peña (INCO); 27 Estero La Jaula, Curicó, Ene. 1964, L. Peña (OTT); 29

13 Potrero Grande, Curicó, Dic. 6, 1959, Peña (INCO). LINARES: 1 Cordi-

llera Parral, Nov. 2-5, 1960, Peña (INCO; 1% 12 Cordillera Parral, Dic. 1-8.

1960, Peña (INCO); 13 Cord. Parral, Nov. 11-25, 1960, Peña (INCO); 3GZ

T'] Castillo, Cord. Parral, Dic. 13, 1964, Peña (INCO); 1% (gen. prep.) 19 Fdo.

Malcho, Parral, Nov. 2-5, 1965, L. E. Peña (INCO); 13 Fdo. Malcho,: Cord.

Parral, Nov. 11-20, L. E. Peña (INCO); 13 Fdo. Malcho, Parral, Linares,

Nov. 2-5, 1960, Peña (OTT); 6 La Balsa, Cord. Parral, Nov. 26-28, 1960,

Peña (INCO); 29 Las Cruces, Cord. Parral, Dic. 12-14, 1960, Peña (INCO);

19 Las Cruces, Cord. Parral, Nov. 11-25, 1960, Peña (INCO); 1 Longaví,

Schonemann S. (BERL); 1% Los Canelos, Longaví, 2000 m, Achoneman S.

(BERD); 17 19 Longaví, Ene. 2, 1899, Schonemann S. (BERL); 19 Parral,

Dic. 1897, Schonemann S. (BERL); 12 Parral, Dic. 1898, Schonemann S. (BERL).

MAULE: 192 Cauquenes, Dic. 9, 1899, Scóonemann S. (BERL). MALLECO:

23 12 Angol, Nov. 14, 1961, H. M. Végas (INCO); 17 Angol, Nov. 9, 1961,

A. Morth (INCO); 13 Angol, Nov. 2, 1958, M. V. Vegas (INCO); 13 Angol.

Dic. 10, 1961, B. Bordel (INCO); 137 Angol, Nov. 25, 1961, Pendoes (INCO»;

13 Angol, Dic. 7, 1961, J. Provost (INCO); 13 Angol, Nov. 30, 1961, R. Coz

S:. (INCO); ES Angol, Nov. 6, 1959, R. Soto (INGCO); 1. Angol Oca

1960, N. Nuñez (INCO); 19 Angol, Nov. 29, 1961, G. Rivas (INCO); 1GZ An-

gol, Nov. 8, A. Mohr (MNHN); 19 Angol, Dic. 4, 1950, Fernández (CEE);

26 Angol, Nov. 17, 1933 (CORN); 1 Angol, Ene. 1, 1951 (GAS); To Angol

Nov. 19, 1940, R. Reiner (USNM); 1 (gen. miss.) Angol, Dic. 8, 1937 (USN M);

19 Angol, Nov. 4, 1959, B. Carvallo (INCO); 19 Angol, Oct. 20, 1956, O. Fetis

(INCO); 19 Angol, Nov. 24, 1960, C. Bormann (INCO); 192 Angol, Dic. 4,

1961, O. Provost (INCO); 12 Angol, Nov. 14, 1961, H. Vegas (INCO); 1G

Angol, Dic. 2, 1960, E. Cedano (INCO); 19 (gen. prep.) Angol, Oct. 28, 1956,

O. Fetis (INCO); 17 12 (cópula) Angol, Nov. 27, 1949, John Dardel (INCO);

192 Angol, Nov. 5, 1961, A. Mohr (INCO); 19 Angol, Nov. 11, 1936 (USNM);

292 Angol, Nov. 18, 1936, L. Hidalgo (USNM); 192 Angol, Oct. 31. 1931, D. $.

Bullock (USNM); 19 Angol, Alto Nahue:buta, Ene. 7, 1930 (USNM); 1 An-

gol, Nov. 1, 1933, D. S. Bullock (USNM); 1% Angol, Nov. 18, 1936, Ramírez

— 276 =

(USNM); 23 Angol, Nov. 11, 1933, E. Neculhueque (USNM); 192 Angol, Nov.

18, 1936, Diener (USNM); 292 Angol, Nov. 1936 (USNM); 13% Angol, Oct. 31,

1935 (SUNM); 1% Angol, Nov. 17, 1933, D. S. Bullock (USNM); 1gZ Angol,

Nov. 11, 1934 (USNM); 13 Angol, Nov. 27, 1936, L. Gavilar (USNM); 1¿Z

Angol, Nov. 10, 1936 (USNM); 13 Angol, Dic. 8, 1939 (USNM); 1% An-

gol, Oct. 29, 1940 (USNM); 13 Angol, Nov. 9, 1928 (USNM); 13 Angol, Nov.

1936, E. Brito (USNM); 13 Angol, Jun. 4, 1933 (USNM); 2 49 Curacautín,

Malleco, Dic. 17, 1959, L. E. Pena (a 32 OTI; 22 JUSNM); 19 Lago: Ga-

lletué, Cord. Lonquimay, Dic. 10-12, 1963, L. E. Peña (INCO); 17 19 10 mi.

N. of Perquenco, Malleco, Ene. 6, 1951, R. £ M. (CAS); 19 Sierra de Nahuel-

buta, W. of Angol, 1200 m., Ene. 1-9, 1954, L. E. Peña (BRAS); 43 39 50 km.

E. of San Carlos, Ñuble, Dic. 26, 1950, R. £ M. (CAS); 13% (gen. prep.) 50 km.

E. of San Carlos, Ñuble, Dic. 26, 1950, R. £ M. (INCO); 1g 29 Recinto,

Ñuble, Dic., 1954, L. E. Peña (BRAS); 3Z Trehualemu, Maule - Ñuble, Dic. 11,

1953, L. E. Peña (237 OTT, 1 INCO); 37 Trehualemu, Maule - Ñuble, Dic.

9, 1953 (OT); 17 Yungay, Nov. 15, 1954, Honhome (INCO). O'HIGGINS:

192 Cord. Rancagua, Dic., 1903, P. Herbst (MUNCH); 17 49 Peumo. Nov.,

IS2E07 B. (1NCO). L 3 502723 km. N. of Rancagúa, O'Higgins, Dic., 1950;

R. £% M. (CAS). SANTIAGO: 5% 109 Aculeo, Santiago, Nov. 3-7, 1959

(INCO); 13% El Canelo, Santiago, Nov. 29, 1954, L. E. Peña (BRAS); 3gZ 192

El Canelo, Nov. 25, 1963, L. E. Peña (INCO); 17 El Canelo, Nov. 21, 1952,

L. Z. R. (INCO); 19 El Canelillo, Santiago, Etcheverry (CEE); 13 El Novi-

ciado, Santiago, Oct. 2-4, 1934, L. E. Peña (BRAS); 194 N9 20601, El Peumo,

Santiago, Nov. 1949 (BRAS); 17 N9 40 19 NO 40 Lo Prado, Dic., 1931, F. Ruiz

(12 INCO; USNM); 53% 39 Maipú, Santiago, Oct. 31, 1959, Peña (INCO);

13 Pudahuel, Nov. 1, 1953, L. Peña (BRAS); 33 Pudahuel, Nov. 12, 1953, L.

Peña (BRAS); 43 62 Pudahuel, Santiago, Nov. 4-12, :1953, L. E. Peña

(BRAS); 15 Pudahuel, Oct. 1, 1953, L. Peña (BRAS); 13 NO 39 Pudahuel,

Nov., 1921, F. Ruiz (INCO); 23 59 Peñalolén, Santiago, Nov. 28, 1954, L. E.

Peña (BRAS); 17 Renca, Oct., 1953, L. Peña (BRAS); 1 NO 20325 San Bernar-

do, Oct., 1944 (BRAS); 19 NO 8319 Santiago, Puelma (BERL); 17 N9 93 Santia-

go, A. Faz (USNM); 1 (gen. miss.) Santiago, B. P. Clark (USNM); 1G

NQ 206000 San Bernardo, Santiago, Oct., 1949 (BRAS). TALCA: 19 22 mi. N.

ol Talca Dic: 22, 1950; R. 82M. (GAS); 2 (gen, prep.) 22 m1 N: ot Talca,

Dic. 22, 1950, R. £ M. (INCO). VALPARAISO: 19 Colliguay, Valparaíso, Nov.

4, 1963, L. E. Peña (INCO); 12: Las Palmas, Quillota, Nov. 20, 1954, L. Peña

(BRAS); 13 Valparaíso, E. Faz (CORN); 1g Valparaíso, Oct. 1922, R.

Martin (PAR); 1 N9 45 19 N9 45 Valparaiso, A. Faz (USNM). Localidad In-

cierta: 1 (gen. miss.) Laguna, Dic. 5, 1898, Schonemann S. (BERL). Sin locali-

dad o fecha: 13 19 Chile, E. P. Reed (17% USNM); 19 INCO); 13 Chile

(BERL); 1 (gen. miss.) Chile (BERL); 19 N9 2065 Scholz S. (BERL); 1 (gen.

MANO (UM Lo” EP. Recd (CAS) 1:90” Dic. 1939 "(USNMD);

23 %9 Chile, E. D. Reed (29 32 CAS; 19 USNM).

= 211 —

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. llustrada en Fig. 483.

PRESA. Hirmoneura articulata Philippi (Dipt. Nemestrinidae).

DISCUSION. Los pelos finos blancos son de aspecto lanoso, bajo el microsco-

pio se observan finamente ramificados; los pelos y cerdas de la línea media del me-

sonotum son siempre negros, pero los elementos notopleurales, intraalares, postala-

res y escutelares varían desde amarillo a negro, algunas veces entremezclados ne-

gros y amarillos, sin embargo lo mas usual es todos amarillos.

El Dr. L. Tsacas, del Museum National d'Histoire Naturelle, Paris, ha estu-

diado la situación del typo de esta especie y me ha informado en comunicación

personal que además del typo de gay: hay varios otros especímenes en ese museo

determinados como gayi por Macquart; estos últimos ejemplares son helix Brom-

ley, y fueron identilicados erroneamente por Macquart. En base a la descripción

de Hull para Cratopoda gayi (Macquart), es muy posibie que el haya visto al-

gunos de estos especímenes mal identificados (helix) y mo el typo de Macquart.

Es por esta razón que Cratopoda helix (Bromley) (la especie nominal original-

mente designada, Art. 70 a (1), en vez de gayi Macquart, se ha designado aquí

como el typo de Cratopoda; gayi Macquart es un Stizolestes.

Un especimen de la colección J. “TT. Medina tiene una etiqueta manuscrita

de Philippi que dice: “Asilus insidiator Ph. nm. sp.”; este es un nomen nudum.

EGCCRITOSTA Schiner

Eccritosia Schiner, 1866, p. 674.

TYPO DEL GENERO: Asilus barbatus Fabricius 1787, por designación original.

Cabeza en vista frontal un - tercio mas ancha que alta; ocellarium grande,

ocelos grandes. Cabeza en vista lateral: área postocular un - quinto del ancho del

ojo; giba facial baja, cara inclinada; antenas con el tercer segmento tan largo

como los dos primeros combinados, comprimidos, apicalmente atenuado, con un

largo y delgado stylo de cerca de dos veces el largo del segmento; mystax abun-

dante, denso pelos en la mitad superior cortos, los de la mitad inferior largos,

derechos. Mesonotum con líneas centrales y manchas laterales, algunas veces poco

definidas; vestidura mesonotal de pelos cortos y ralos, unos pocos pelos mas lar-

gos en el área posterocentral; 2-3 cerdas dorsocentrales bien definidas, ubicadas

detrás de la sutura transversa. Scutellum con abundantes pelos largos dirigidos

dorsalmente; cerdas scutellares no definidas. Costados del postmesonotum con mi-

cropubescencia, sin pelos. Celdas marginal y cuarta posterior cerradas y pedicela-

das; R, y R, alcanzan el borde del ala antes del ápice; celda anal cerrada y

pedicelada; M, y m forman un ángulo de 909. Espinas de las tibias frontales

ausentes. Abdomen deprimido suavemente, atenuado en los machos, cónico en las

— 278 —

hembras. Alas no alcanzan el extremo del abdomen en las hembras, en los machos

estas alcanzan el extremo; en individuos recién emergidos, el abdomen es mas

corto que en los individuos endurecidos. Genitalia de los machos rotada; hypan-

drium corto; epandrium moderadamente grande, sin ornamentaciones, gonopodos

de la mitad del largo del epandrium, dististylus con varias espinas gruesas, cor-

tas, en el borde ventral, las cuales son facilmente visibles desde una vista ventral

(Fig. 371, 374). Genitalia de la hembra cónica, larga; ovipositor con 12-13 pa-

res de espinas gruesas.

DISTRIBUCION. Neártica, Neotropical, 6 especies, 1 en Chile, Eccritosia ru-

briventris (Macquart).

Eccritosia puede ser separada de Proctacanthus Macquart del cual es próximo

por Ja forma y constitución del mystax, el cual está formado por abundantes pe-

los en Eccritosia y de cerdas mas o menos ralas en Proctacanthus. La funda del

pene tiene también distinta forma, ver Fig. 376 y Martin, 1968, figs. 91, (Eccri-

tosia) 94 y 106 (Proctacanthus).

Eccritosia rubriventris (Macquart)

(Figs. 371-377, 410)

Proctacanthus rubriventris Macquart, 1850, p. 87, Pl. 8, fig. 3, Brasil; Schijer,

1866, p. 714; Hull, 1962, p. 488; Bromley, 1946, p. 116; Lynch, 1880, p. 259 -

250, Brasil, Colchagua Chile, Tucumán y Mendoza Argentina.

Eccritosia rubriventris (Macquart). Carrera, 1960, p. 50-51, Sur del Braz:l, desde

Sao Paulo a Buenos Aires, Tucumán y Salta (W. Argentina), y Chile.

Asilus xanthopogon Burmeister, 1861, L, p. 317, ii p. 171, Mendoza.

Erax speciosus Philippi, 1865, p. 193, Pl. 26, fig. 28, Colchagua; Schiner, 1866, p.

IES

Eccritosia speciosa (Philippi). Stuardo, 1946, p. 84.

TYPO. ¿G, Brasil; lugar de depósito desconocido. Typo de 4. xanthopogon

posiblemente en el Museo de la Plata. Typo de E. speciosus, perdido.

DIAGNOSIS. Cuerpo grande, robusto; mystax y barba amarilla, larga y densa;

pelos frontales densos, negros; mesonotum amarillo o rojizo oscuro con bien de-

finidas líneas centrales y manchas laterales; scutellum con abundantes pelos ama-

rillos; primero y segundo segmentos abdominales negros, primer segmento con

abundantes pelos amarillos en los costados, el resto de los segmentos oscuros o

rojizo claro; patas negras, pelos y cerdas negras.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara cubierta por densa micropubescencia

dorada clara; frente negra brillante; pelos frontales abundantes, negros; ocella-

rium negro, ocelos rojo oscuro; cerdas ocelares delgadas, proclinadas. Cabeza en

vista lateral (Fig. 572): cara plateada; mystax amarillo, largo, ahundante, los pe-

los super/ores mas cortos; antenas negras, primer segmento con micropubescencia

plateada rala, unos pocos pelos cortos negros en los dos primeros segmentos;

tercer segmento negrusco, stylo café claro en el ápice; barba densa, amarilla;

área postocular con micropubescencia plateada, mas densa en la parte super'or

detrás del ocellarium; proboscis grande, curvada, negra, con finos pelos blanque-

cinos en la parte posteroventral, en el ápice, pelos cortos café oscuros; palpos

maxilares negros con abundantes pelos amarillos, algunos largos, pelos negros

alrededor del ápice. Protórax negro, pleura con densos pelos amarillos, pronotum

con pelos negros dispersos, una línea de pelos blancos en el borde frontal del

collar; cerdas del collar negras. Pleuras toráxicas negras, desuniformemente cu-

biertas con micropubescencia plateada; pelos amarillos, semejantes al mystax, en

la mitad posterior de la mesopleura y de la sternopleura, la mayoría dirigidos

hacia atrás; pelos negros, semejantes a los pelos del collar, en la mitad superior

de la mesopleura; cerdas mesepimerales en forma de pelos, amarillos, semejantes

a los pelos del metepisternum. Mesonotum corrientemente amarillo en su mayor

parte, con bordes mas oscuros y callos posteriores y humeraes; líneas centrales

y manchas laterales corrientemente poco definidas, en algunos especimenes con

mesonotum rojo se distinguen claramente dos líneas centrales y las manchas late-

rales negras; vestidura mesonotal de pelos cortos negros y ralos, mas largos cerca

de los bordes; scutellum negro con abundantes pelos amarilos en el borde pos-

terior, pelos proclinados, scutellum luce uniformemente cubierto de pelos; 3 cer-

das dorsocentrales negras cerca del borde posterior; 2 cerdas notopleurales negras;

l cerda intraalar negra; 2 cerdas intraalares negras. Costados del postmesonotum

con micropubescencia plateada. Alas (Fig. 377) hyalinas, algunas veces ligeramente

amarillentas; membrana finamente ondulada. Patas negras; coxas con pelos ama-

rillos, mas largos y mas abundantes en las coxas frontales, entremezclados apro-

ximadamente en igual cantidad con pelos negros y blancos; fémures tibias y tar-

sos con pelos negros, ligeramente mas abundantes en las tibias posteriores; cer-

das negras. Uñas negras. Primeros dos segmentos abdominales negros, el resto de

los segmentos rojizos; micropubescencia dispersa en los costados de los tergites

3 y 4 vestidura de los segmentos 1 y 2 de pelos negros, abundantes pelos amari-

llos en los costados del tergite 1, vestidura de los segmentos 3-8 de cortos pelos

linos amarillos disperos; pelos de los sternites ligeramente mas largos. Genitalia

(Fig. 311, 375) pequeña, semejante en color a los segmentos 3-8, algunas ve-

ces ligeramente mas oscura, vestidura de pelos cortos amarillos; funda del pene

como en la Fig. 376.

HEMBRA. Semejante al macho, corrientemente mas larga y mias robusta; ab-

domen fuertemente atenuado, corrientemente rojizo oscuro, desnudo en el dorso;

ovipositor (Fig. 273) con finos pelos cortos blancos y 11-2 pares de espinas ro-

jas en el extremo.

— 280 —

MEDIDAS. Largo total 30.0-38.5 mm., promedio 31.4 mm.; largo de ala

17.0-27.3 mm., promedio 22.0 mm.; ancho de ala 5.1-17.2 mm.,, promedio 5.9.

MATERIAL EXAMINADO: 43% y 192. ARAUCO: 13 N9 1193, Arauco,

Marzo 14, 1959, Flores (INCO); 14 Arauco (INCO); 287 39 (2£Z con presa)

Arauco, Ene. 15, 1961, Orellana (INCO) 19 Llico (JIM). CAUTIN: 3gZ 39

(19 con presa) Puerto Saavedra, Ene. 4, 1963, Fetis (INCO). Concepción: 13

Concepción, Ene. 10, 1962, Mendez (INCO); 1% Concepción, Schonemann

(BERL); 13 Concepción, Dic. 5, 1908, P. Herbst (USNM); 19 Concepción,

Ene. 3, 1906, P. Herbst (USNM). MALLECO: 1. Angol, Ene. 4, 1941, D., $S.

Bullock (USNM); 13 N9 222 Angol, Feb. 20, 1927 (USNM). ÑUBLE: 192 Cob-

quecura, Costa del Ñubie, Feb. 12-14, 1959, L. E. Peña (INCO). SANTIAGO:

ANS 19 N9 5 Gantagena, Ene... 1933, F.. Ruiz (USNM).. TARAPACA: 1

Punta de Lobos, Ene., 1937, F. Ruiz (USNM). Sin localidad ni fecha: 19 NQ 743

Chile, Sholz S. (BERL); 1 N9 70 Chile, 1922, A. Faz (USNM). Argentina: .1g

Pocitos, Salta, Argentina, Dic., 1956, Fritz (INCO). Brasil: 19 Sao Paulo, Brasil

(INCO). Uruguay: 13 La Paloma, Bocha, Uruguay, Ene. 23, 1921, A. Wetmo-

re (USNM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 410.

DISCUSION. Especimenes de Argentina, Brasil, Chile y Uruguay pertenecen

a esta especie, confirmando su amplia distribución. El color del mesonotum varía

desde amarillo con casi sin líneas centrales ni manchas laterales hasta el rojo

oscuro con líneas centrales y manchas laterales negras; el color del mesonotum

está aparentemente relacionado con la edad del individuo, siendo mas oscuro

en los individuos de mas edad; el color del abdomen varía del naranja al rojo

oscuro, las hembras generalmente tienen el abdomen mas oscuro.

Cuatro puparios pertenecientes a esta especie han sido colectados, una vista

lateral de uno de ellos se muestra en la Fig. 252.

EFFERIA Coquillet

Efferia Coquiilet, 1893, p. 175; Martin, 1961, p. 1-4; 1965, p. 28.

Erax varios autores, no Scopoli 1763.

Nerax Hull, 1962, p. 476 (sinónimo de Efferia).

TYPO DEL GENERO: Efferia candidus Coquillet, 1910, por designación original.

Cabeza en vista frontal, un - cuarto mas ancho que alto; vertex profunda-

mente excavado; oceilarium pequeño y bajo. Cabeza en vista lateral: área pos-

tocular de un - décimo del ancho del ojo; giba facial bien desarrollada, redondea-

da, ocupando tres - cuartos de la cara; antenas largas, primero y tercer segmentos

subiguales en largo, el segundo bastante mas pequeño; tercer segmento compri-

mido, atenuado hacia el ápice, con un largo y delgado stylo, de aproximadamen-

te una - y - media vez el largo del segmento y con una corta espina en el ápice;

mystax grueso, largo, los pelos dirigidos hacia adelante y luego curvados hacia

abajo, cerca del borde oral el mystax se compone de cerdas. Mesonotum con ban-

das centrales y manchas laterales, la vestidura es de pelos cortos frente a ia su-

tura transversa, mas largos posteriormente; cerdas dorsocentrales bien definidas

detrás de la sutura transversa. Scutellum cubierto de micropubescencia y pelos

ralos de tamaño mediano; 3-5 pares de gruesas cerdas scutellares. Costados del

postmesonotum con micropubescencia, 2-3 pelos cortos, débiles a veces presentes.

Celda marginal cerrada y pedicelada; cuarta celda posterior cerrada y pedicelada;

R, angulada en su origen, corrientemente con una vena trunca; R, y R, alcan-

za el borde del ala antes del ápice del ala en los especimenes chilenos; celda

anal cerrada con un corto pedicelo; M, y m forman un ángulo 1109 - 1259;

membrana de las alas ligeramente ondulada. Espina frontotibial ausente. Abdo-

men largo, cilíndrico. Alas mas cortas que el abdomen. Genitalia del macho

erande, alargada, en forma de clava, fuertemente comprimida, formando un án-

gulo de 909 - 1109 con el abdómen, no rotada; hypandrium corto; epandrium lar-

go, comprimido, en forma de forceps. Hembra con el ovipositor largo, compri-

mido, sin espinas.

DISTRIBUCION. Neártica, Neotropical, 189 especies; 1 especie en Chile, E.

patagonensis (Macq.).

Efferia patagonensis (Macquart) n. comb.

(eso 2 cla)

Erax patagonensis Macquart, 1850, p. 83, Patagonia; Schiner, 1866, p. 713, Pata-

gonia; Lynch A., 1880, p. 113 - 114, Mendoza, Buenos Aires, Argentina.

TYPO. Z, Patagonia, M. D'Orbigny, en el Museum National d'Histoire Na-

turelle, Paris, Francia (no visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo negro, fémures café rojizos en el lado dorsal, negros en

el lado ventral; tibias y tarsos rojizos; tergites 2 y 3 blancos en la mitad posterior,

tergites 6 y 7 completamente blancos; mystax blanco con pelos negros entremez-

clados.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y frente cubierta de micropubescencia

café, mas dispersa bajo las antenas y micropubescencia plateada a lo largos de

los bordes de los ojos en la cara; pelos frontales negros, entremezclados con pe-

3092

los blancos, 3 cerdas negras en el borde de los ojos al nivel de las antenas;

ocellarium con micropubescencia café, ocelos café claros; cerdas ocelares negras,

2 largas y gruesas en el frente. Cabeza en vista lateral (Fig. 251): giba facial

café, plateada en el borde de los ojos; mystax de gruesos pelos negros en la par-

te superior de la giba facial, y una fila de 6 largas cerdas gruesas en cada lado

del borde oral, 4 cerdas amarillas cerca del centro, 2 cerdas cerca de los estremos,

y finos pelos cortos blancos de tamaño mediano sobre la giba facial; primeros 2

segmentos antenales negros con cortos pelos blancos; tercer segmento corto, piri-

forme, con un largo stylo que lleva una corta espina en el ápice, el segmento y

el stylo café oscuro; barba de finos pelos blancos; vertex y área postocular con

micropubescencia rala, café, micropubescencia plateada a lo largo del borde pos:

terior de los ojos; vestidura postocular de finos pelos blancos ralos; 6 cerdas occi-

pitales en cada lado del vertex, algunas negras, otras ligeramente cafés; una fila

de cerdas a lo largo del borde posterior de los ojos, pelos negros en la parte su-

perior y café en la parte inferior; proboscis negra, con pelos largos dispersos

blancos en los lados ventral y laterales, pelos cortos blancos en el ápice; palpos

maxilares negros, con largos pelos finos y blancos en la parte basal, y gruesos,

largos y negros en la parte distal. Protórax negro con pelos finos blancos uni-

formemente distribuidos; 4-5 pares de cerdas café en el collar. Pleura toráxica

negra con micropubescencia dorada oscura desuniformemente distribuida, vesti-

dura de pelos blancos y negros entremezclados; cerdas mesepimerales negras. Me-

sonotum cubierto por micropubescencia dorada y plateada, menos densa en las

manchas laterales y ausentes en las líneas centrales las cuales son anchas y negras;

vestidura de pelos cortos negros dispersos, algunos mas largos y blancos en el

área posterocentral y en los bordes; scutellum uniformemente cubierto con pelos

blancos dispersos y unos pocos pelos negros entremezclados; 3-5 cerdas dorsocen-

trales negras; 2 cerdas notopleurales negras; 2-3 cerdas intraalares negras; 2 cer-

das postalares negras; 2 pares de cerdas scutelares negras. Costados del postmeso-

notum con micropubescencia plateada y unos pocos pelos negros. Alas hyalinas;

venas café, mas claras en el área basocostal. Coxas negras con micropubescencia

plateada y pelos blancos, los cuales son mas abundantes en la parte frontai de

las coxas anteriores; fémures bicoloreados, rojizos en la parte dorsal y negros en

la parte ventral; tibia y tarso café rojizos, los tarsos mas oscuros; vestidura de

las patas de finos pelos blancos, cerdas negras. Uñas negras. Tergites 2-5 negros

con micropubescencia blanca en la mitad posterior, mas definido en los tergites

2 y 3; tergites 6 y 7 uniformemente cubiertas de densa micropubescencia pla-

teada blanquecina; sternites con micropubescencia blanca; vestidura abdominal

de finos pelos blancos, mas largos en los esternites; 2-3 cerdas negras o cafés

en cada lado del primer tergite. Genitalia del macho en su mayoría rojiza, ves-

tidura de pelos negros y blancos (Fig. 249).

— 283 —

HEMBRA. No vista.

MEDIDAS. Largo total 17.0 mm; largo de ala 11.0 mm; ancho de ala 3.1 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 1¿ Chile, E. P. Reed (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Según Lynch A. (1880: 113), Mendoza,

Buenos Aires y Patagonia, Argentina. Es posible que esta especie se encuentre en

la Patagonia Chilena (Fig. 413).

DISCUSION. El único especimen colectado en Chile, no tiene localidad espe-

cifica; podría ser de Patagonia.

EREMOMYIA: mn. gen.

TYPO DEL GENERO: Eremomyia tumbrensis Mn. sp.

Cabeza en vista frontal un - quinto mas ancha que alta; vertex profunda-

mente hundido; ocellarium de tamaño moderado; ocelos grandes. Cabeza en vista

lateral: área postocular un - séptimo del ancho del ojo; giba facial bien desarro-

llada, ocupando ligeramente mas de la mitad de la cara; segundo segmento an-

tenal menos de la mitad del largo del primero, tercer segmento de largo seme-

jante al primero, comprimido, con un pequeño microsegmento que lleva un lar-

go stylo terminal, el cual es dos - y - media vez el largo del segmento, con una cor-

ta espina en el ápice (Fig. 253); mystax de abundante pelo, mas corto y dobla-

do en la mitad superior, largo y dirigido en su mayoría hacia abajo en la mitad '

inferior. Mesonotum con líneas centrales y manchas laterales; vestidura de cortos

pelos uniformemente distribuidos frente a la sutura transversa, detrás de la sutu-

ra son mas largos; cerdas dorsocentrales poco diferenciadas de los pelos de la zo-

na. Scutellum con abundantes pelos largos dirigidos dorsalmente; cerdas scutella-

res no diferenciadas de los pelos. Costados del postmesonotum con micropubes-

cencia, sin pelos. Celdas marginales y cuarta posterior cerradas y pediceladas; R,

y R, mas o menos paralelas en la parte central, ambas alcanzan el borde del

ala antes del ápice; celda anal cerrada y pedicelada; M, y m forman un ángulo

de 909. Espina de las tibias anteriores, ausente; tibias medianas y posteriores

con una protuberancia en el ápice, mas definida en los machos (Fig. 257).

Abdomen de los machos cilindrico, de las hembras cónico; sternite 8 de los ma-

chos, grande, con una emarginación en cada lado antes del borde posterior; bor-

de posterior con un denso mechón de pelos los cuales son mas cortos en el cen-

tro, en general tiene el aspecto de una brocha (Fig. 260). Genitalia de los ma-

chos en forma de cuenta, no rotada (Figs. 254 y 260); apandrium distendido,

globoso, con una emarginación y un proceso digitiforme en la parte posterodor-

— 284 —

sal; gonopodos cortos, moderadamente hinchados, en vista lateral corrientemente

completa o parcialmente escondidos por el epandrium y el sternite 8. Genitalia

de la hembra larga, cónica, apareciendo bifurcada en el ápice (Fig. 259) debido

a los ápices divergentes de los cercos; sin espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 1 especie, Eremomyia tumbrensis n. sp.

Este género está relacionado con Lochmorhynchus Engel, del cual puede se-

pararse por la forma de cuenta de la genitalia de los machos y por el ovipositor

bifurcado de las hembras.

El nombre Eremomyia hace referencia al hábitat desértico del genotypo

(epruos = desierto; puLa = mosca).

Eremomyia tumbrensis n. sp.

(Figs. 253 - 260, 479)

TYPO. G, de Tumbre, Antofagasta, Feb. 26 - 29, 1960, Peña; este especimen está

depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad de Concepción,

Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo café oscuro, algo de la vestidura del mesonotum, las cer-

das ventrales de los tarsos y algunas veces las cerdas ocelares, negras, el resto de

las cerdas y pelos blancos; genitalia masculina en forma de cuenta; ovipositor

bifurcado en el extremo.

DESCRIPCION DEL TYPO (¿). Cabeza en vista frontal: cara, frente y vertex

con micropubescencia amarillenta, menos densa en la frente; pelos frontales blan-

cos; ocellarium negro, ocelos amarillentos; cerdas ocelares en su mayoría blancas,

2 de ellas negras. Cabeza en vista lateral (Fig. 255): giba facial gris, mystax blan-

co; antenas café oscuras, segundo segmento rojizo en el borde distal, primero y

segundo segmentos con pelos blancos cortos; barba blanca; área postocular con

micropubescencia plateada, vestidura de pelos amarillos; cerdas postoculares y

occipitales amarillas; proboscis negra brillante, con pelos largos dispersos en la

mitad basoventral, pelos cortos amarillos en el ápice; palpos maxilares negros con

pelos blancos. Protórax con micropubescencia plateada y café, pelos blancos; cer-

das del collar amarillas.. Pleura torácica desuniformemente cubierta de micropu-

bescencia plateada y pelos largos, dispersos, blancos; cerdas mesepimerales amari-

llas. Mesonotum con micropubescencia plateada excepto en las líneas centrales

las cuales lucen glabrosas café oscuras, manchas laterales con micropubescencia

café grisásea; vestidura de pelos negros cortos dispersos en el área central, en los

bordes y en el área posterocentral, blancos, mas largos; scuteilum café oscuro

brillante con largos pelos amarillos dispersos, uniformemente distribuidos; 6 cer-

das dorsocentrales blancas, ubicadas posterior a la sutura transversa; 3 cerdas no-

— 285 —

top!eurales blancas; 2 cerdas intraalares blancas, 1 mas gruesa; 4 cerdas postala-

res blancas. Alas (Fig. 258), hyalinas. Coxas semejantes en vestidura a las pleu-

ras toráxicas, los pelos y las cerdas blancas, los pelos de la parte anterior de las

coxas frontales son mas densos y mas largos; fémures bicoloreados, negros en el

dorso, café rojizo en la parte ventral; tib'as (Fig. 257) y tarsos café rojizos, ti-

bias posteriores mas oscuras en la parte dorsal cerca del ápice; pelos y cerdas

de las patas blancos, excepto por algunas cortas cerdas en el lado ventral de los

tarsos y por una fila de 5 cerdas cortas en la parte anterior de las tibias fronta-

les, las cuales son negras. Uñas negras, café roj'zas en el quinto basal. Abdomen

negro. desuniformemente cubierto con micropubescencia dorada oscura en los

tergites y micropubescencia plateada en los sternites; tergite 7 rojizo en los cos-

tados; vestidura de largos pelos biancos en los tergites 1-3 y diminutos peios

blancos en los tergites 4-8; sternite 8 con una densa fila de pelos dorados bri-

llantes en el borde posterior. Genitalia café rojiza con pelos cortos blancos de-

primidos (Fig. 254); epandrium con una emarginación en la parte posterodorsa)

y un pequeño proceso digitiforme cerca del ápice (Fig. 260); funda del pene se-

gún ilustración en Fig. 255.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Fig. 256) cónico, café roj'zo y ne-

gro; cercos divergentes en el ápice, el extremo del ovipos:tor aparece como bi-

furcado (Fig. 259).

E: nombre tumbrensis se refiere a la localidad de typo.

MEDIDAS. Largo total 20.0 -25.5 mm., promedio 23.5 mm. [typo 24.0 mm];

largo del ala 15.5 - 17.53 mm., promedio 15.2 mm. [typo 16.9 mm]; ancho del ala

3.2 -4.5 mm., promedio 4.0 mm. [typo 4.1 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 63 y 1292. ANTOFAGASTA: 17 Pocos, Anto-

fagasta, Abr. 1954, L. Peña (BRAS); 17 59 Talabre, Antofagasta, Dic. 15, 1961,

Peña (INCO); 23 [typo] 22 Tumbre, Antofagasta, Feb. 26-29, 1960, Peña

(INCO): 13 (gen. prep.) 29 Tumbre, W. Vn. Laskar, 3500 m., Antofagasta, Ene.

1953, F. Soza (INCO); 1 Linzor, Feb. 18, 1960, Peña (INCO); 19 Sobraya, 700

mi, Nov., 1955, L. E. Peña (BRAS); 1 QMéTOoconao, 2480 mo Mar. 1954 E MBbena

(BRAS); 13 Aguas Claras, Antofagasta, Dic. 9, 1966, Col. Herrera, Cent. Ent.

U. Chile (INCO); 19 Puritam 3700 m., Antofagasta, Dic. 10, 1966, Col. Herre-

ra, Cent. Ent. U. Chile (CEE); 192 San Pedro de Atacama, Antofagasta, 28 - 30

Nov., 1959, Inst. Pedagógico (INCO). Sin localidad ni fecha: 1% L. E. Peña

(INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. liustrada en Fig. 479.

DISCUSION. En muchos especímenes, la micropubescencia de los tergites le da

al abdomen una apariencia bandeada. La protuberancia en la parte ventral - dis-

286 =

tas de la tibia es corrientemente mas conspicua en los machos, algunas veces una

de las cerdas de la protuberancia es negra, el resto blancas. Las 5-6 cerdas cor-

tas en la parte anterior de las tibias frontales son usualmente blancas, algunas

veces entremezcladas blancas y negras, otras veces solo negras, como en el typo.

LOCHMORHYNCHUS Engel

Lochmorhynchus Engel, 1930, p. 459; Hull, 106 pogo:

TYPO DEL GENERO: Proctacanthus senectus Wulp, 1882, por designación

original.

Cabeza en vista frontal un - sexto mas ancha que alta; vertex profundamente

hundido; ocellarium pequeño; ocelos pequeños. Cabeza en vista lateral: área pos-

tocular un - cuarto del ancho del ojo; giba facial fuertemente desarrollada, redon-

deada, ocupando tres - cuartos de la cara; antenas con el segundo segmento com-

primido, atenuado distalmente, de largo variable, desde igual hasta una - y - me-

dia vez el largo del segundo segmento, en el ápice lleva un largo y delgado sty-

lo que es dos- y - media vez a tres veces el largo del tercer segmento, el stylo

lleva una corta espina en el ápice; mystax abundante con pelos cortos en la par-

te superior y en la parte inferior algunos pelos son mas largos, el resto son grue-

sas cerdas mas largas que los pelos y dirigidas ventralmente. Mesonotum con lí-

neas centrales y manchas laterales bien definidas; vestidura del mesonotum de

pelos cortos uniformes y dispersos; unos pocos pelos largos detrás de la sutura

transversa, en el área posterocentral; cerdas dorsocentrales bien definidas detrás

de la sutura transversa; scutellum con largos pelos dirigidos dorsalmente, algunas

veces mezclado con largas cerdas escutelares corrientemente no discernibles de

los pelos del disco del scutellum. Costados del postmesonotum con micropubes-

cencia, sin pelos. Celdas marginal y cuarta posterior cerradas y con pecíolo; R,

y R. alcanzan el borde del ala antes del ápice; celda anal cerrada y pedicelada;

M, y m forman un ángulo de 900; área costal fuertemente expandida en los

machos. Espinas de las tibias anteriores ausente. Abdomen largo y atenuado en

los machos, cónico en las hembras. Alas mas cortas que el abdomen. Genitalia

de los machos de tamaño mediano a grande, no rotada, corrientemente formando

un ángulo de 1409 con el abdomen; sternite 8 corrientemente largo, siempre

con una emarginación central en el borde posterior, por lo menos de la mitad

del largo del sternite; el sternite 8 parece formar parte de las estructuras genita-

les; hypandrium corto, oculto bajo el esternite 8; epandrium de tamaño mediano

a grande, corrientemente con emarginaciones en el borde distal. Genitalia de la

hembra cónica o comprimida formando una estructura en forma de sable; sin

espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION. Neotropical, 4 especies; 3 especies en Chile.

— 287 —

CLAVE PARA LAS ESPECIES CHILENAS DE LOCHMORHYNCHUS

ns Mystax blanco, amarillo, o amarillo rojizo, rara vez con unos

pocos pelos negros entremezclados; primero y segundo seg-

mentos antenales con pelos de color semejante al del mystax;

ovipositor de las hembras como en las Figs. 265 y 273 o 268

y RETO Mn A o 2

18 Mystax negro con pelos blancos entremezciados; primero y se-

gundo segmentos antenales con pelos negros: ovipositor como

enla Eros a aa: L. puntarenensis n. sp.

2(1) Epandria con un proceso terminal (Fig. 263); ovipositor cónico;

extenciones posteriores del tergite 9 bastante agudas (Fig. 265)

A nd AA cd L. griseus (Guerin)

2 Epandria sin un proceso terminal (Fig. 261); ovipositor fuerte-

mente comprimido, en forma de sable (Figs. 268, 270); exten-

ciones poster lores del tergite 9, angostas, no más largas que

los cercos y corrientemente ocultas por eilos (Fig. 270) ........

A td is e L. borrori n. sp.

Lochmorhynchus borrori n. sp.

(Figs. 261, 264, 268, 270, 496)

TYPO. ¿G, Chil:án, Nov. 21, 1963, J. Artigas; este especimen está depositado

en el Departamento de Zoología de la Universidad de Concepción, Ch/le.

DIAGNOSIS. Semejante a los especímenes castaños de £. griseus, de los cuales

puede separarse por los epandria sin procesos terminales y el ovipositor fuertemen-

te comprimido, y por las extensiones lateroposteriores del tergite 9 que no se

proyectan mas aliá del ápice de los cercos.

DESCRIPCION DEL TYPO (¿G). Cabeza en vista frontal: cara, frente y ver-

tex cubiertos por micropubescencia dorada, excepto en el centro de la frente; pelos

frontales amarillos y negros entremezclados, los pelos inferlores en su mayoría

amarillos; ocellarium desuniformemente cubierto de micropubescencia dorada,

ocelos amarillos; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral: giba facial dorada;

mystax abundante, amarillo; antenas negras, primero y segundo segmentos con

pelos cortos amarillos, segundo segmento l'geramente rojizo en los costados; bar-

ba amarilla; área postocular desuniformemente cub/erta de micropubescencia do-

rada, vestidura de fimos pelos amarilos dispersos; cerdas postocu:.ares amarillas;

— 288 —

un grupo de 7-9 cerdas occipitales amarillas ubicadas a cada lado del vertex

detrás del borde de los ojos; proboscis negra brillante con pelos largos, fimos

amarillentos ubicados en el lado posteroventral, pelos cortos finos amarilos en el

extremo; palpos maxilares negros con pelos amarillos. Protórax negrusco, desuni-

formemente cub“erto por micropubescencia dorada oscura y largos pe/os ralos finos

amarillos; cerdas del coliar amaril.as. Pleura toráccica cubierta por micropubes-

cencia plateada y dorada, en los bordes de los escleriteses mas abundantes la mi-

cropubescencia plateada, en la mitad posterior de la mesopleura, en la sternopleu-

ra, hay algunos f nos pelos amari.lo; cerdas mesepimera.es finas, amarillas. Me-

sonotum densamente cubierto por micropubescencia dorada oscura excepto en

las líneas centrales y en la parte interior de las manchas laterales, la vestidura

es de pelos cortos negros, dispersos, mas largos en el borde anterior, en los ca-

llos humerales y en ei área posterocentral; líneas centrales separadas por una

línea de micropubescencia; gris dorada scutellum semejante en covertura al meso-

notum, con finos pelos largos, ralos los cuales son negros cerca del borde ante-

rior y amarillos en el posterior; 4 cerdas dorsocentrales negras, ubicadas poste-

r'ormente, unas pocas cerdas amari-las entremezciadas cerca del borde posterior;

2 cerdas notopleurales amar llas; 1 cerda intraalar amarilla; 2 cerdas postalares

amari:las; 2 pares de cerdas piliformes, débiles y amarillas en el scutellum. Costa-

dos dei postmesonotum densamente cubiertos de micropubescencia dorada y pla-

teada. Alas hyalinas, café a lo largo de los bordes de las venas, venas café oscu-

ras; celda marginal café oscura en la expansión; celda marginal y primera celda

submarginal con membrana corrugada, el resto de la membrana ligeramente on-

deada. Coxas cubiertas de micropubescenia dorada, finos pelos amarillos y cerdas

amar'ilas, los pelos son mas abundantes y largos en la parte anterior de ¡as co-

xas frontales; fémures negros, ligeramente rojízos en ambos extremos, cubiertos de

pelos finos, amarillos, los cuales son mas largos en la parte posterior y ventral;

sin cerdas en los fémures anteriores, fémures medianos y posteriores con pelos

amarillos y 2 o 3 cerda negras cerca del ápice en el lado ventral; tibias y tarsos

rojizos con pelos amariilos, cerdas dorsales amarillas, cerdas ventrales negras.

Abdomen cubierto con densa micropubescenc'a dorada clara, excepto en el dorso

del tergite 8, esta área luce negrusca; vestidura de finos pelos amarillos, ralos,

ligeramente mas largos en los costados de los tergites 1-3 y en los sternites; ster-

nite 8 con abundantes pelos amarillos dirigidos posterodorsalmente. Genitalia ne-

gra, cubierta de pe/os finos, amarillos, ralos (F'g. 261); funda del pene como en

la Fig. 264.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor fuertemente comprimido, en forma

de lámina (Figs. 268 y 270); tergites 8 y 9 negro brillantes; procesos lateropos-

teriores dei tergite Y angostos, sin extenderse mas allá del ápice de los cercos.

Esta especie es dedicada al Dr. D. J. Borror de the Ohio State University.

— 289 —

MEDIDAS. Largo total 19.0 -26.3 mm., promedio 23.5 mm [typo 26.3 mm.);

largo de ala 15.2- 19.0 mm., promedio 17.5 mm. [typo 17.2 mm.]; ancho de ala

3.5-5.9 mm., promedio 4.9 mm. [typo 5.1 mm].

MATERIAL EXAMINADO. 403 y 3392. BIO BIO: 1% El Abanico,

BIO BIO, Dic. 31, 1950, R £ M. (INCO); 1 9 Negrete, Bio Bio, Dic. 31, 1950, R. £

M. CAS). CONCEPCION: 1¿G Concepción, 1904, P. Herbst (CAS); 12 Penco,

Feb. 5, 1955, Rebolledo (INCO). CURICO: 27 Estero La Jaula, Curicó, Ene.,

1964, L. E. Peña (OTT); 23 Rio Colorado, Cord. Curicó, Ene. 1964, L. Peña

(OTT); 13 Potrero Grande, Curicó, Dic. 6, 1959, Peña (INCO). LINARES:

192 Bullileo, Feb., 1959, I. Pedagógico (CEE); 1 Cord. Parral, Dic., 1956, Peña

(INCO); 19 Estero Leiva, Cordillera Parral, Ene. 8-12, 1958, Barros - Peña

(INCO); Ig (gen. prep.) Estero Leiva, Cord. Parral, Ene. 8-12, 1953. Ba-

rros - Peña (INCO); 13 Fdo. Malcho, Cord. Parral, Feb. 1958, M. Rivera (INCO);

IS 1.2 Edo. Malcho, Parral, .Ene.,. 1957, E. E. Peña (UNCO); 17: Rio Deno;

Cord. Curicó, 1300 m., Ene. 19-20, 1964, L. E. Peña (INCO). MALLECGCO;

192 Angol, Feb. 6, 1934, D. S. Bullock (USNM); 1 Collipulli, Ene. 3, 1963,

Mendez (INCO); 13 El Vergel, Ene. 28, 1958, R. R. (INCO). ÑNUBLE: 4H

2.9 Atacalco, Ñuble, 600 m., Ene. 22; 1955, L. E. Peña. (BRAS); 1.9 Ghillán;

Nov. 21, 1955, J. Artigas (INCO); 23% N9 157 y NQ 1161 Chillán, Nov. 26, 1955,

J. Artigas (INCO); 23 Chillán, Nov. 25, 1955, J. Artigas (INCO); 17 39 Chi-

llán, Ene. 4, 1956, J. Artigas (INCO); 13 Chillán, Ene. 26, 1954, F. de la Fuen-

te (INCO); 13 [typo] Ch:llán, Nov. 21, 1963, J. Artigas (INCO); Ig 129 Re-

cinto, Ñuble, Ene., 1955, .L.. E. Peña (INCO); 3.2 Recinto, Ñuble, Ene. 11995

E; E. Peña (BRAS); 2 40 km. -E. of;San Carlos, Ñuble, Dic. +23, 1950034

M (CAS); 1 192 San Fabián de Alico, Ene. 1954, L. E. Peña (INGO);*4F

62 50 km. E. of San Carlos, Ñuble, Dic. 26, 1950, R. £ M. (33 592 CAS; 1gZ

192 INCO). SANTIAGO: 17 29 Cortaderal, Feb. 2, 1899, Schonemann S.

(BERL); 17 El Membrillo, Alhué, Stgo. Nov. 1-2, 1947, L. E. Peña (INCO»;

19 Lampa, Santiago, Zapata (CEE); 1 Macul, Santiago, M. Etcheverry (CEE).

TALCA: 17 19 Fdo. El Rodeo, Cord. Talca, 700. m., “Ene. 5:=:8, 1951 Bea:

Barros (INCO); 137 Rio Lontué, Talca, Aravena (CEE). VALPARAISO: 27 L.

de Vaquez, Ene. 20, 1956, H. Toro (CEE). Localidad incierta: 23 Sobraya,

700 m., Nov. 1955, L. E. Peña (BRAS). Sim localidad ni fecha: 1% (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 496.

DISCUSION. Los individuos de esta especie muestran poca variación en co-

lor; los individuos mas viejos se muestran muchas veces grasosos y por ello lucen

mas oscuros, especialmente en el mesonotum y en los tergites.

Material de esta especie ha sido a menudo identificado por S. W. Bromley

y M. Carrera como Lochmorhynchus longiterebratus Macquart 1850, sin embargo

longiterebratus de acuerdo a la figura dada por Macquart (Pl. 8, fig. 7), tiene

— 290 —

el ovipositor cónico mientras que en borrori n. sp. el ovipositor es fuertemente

comprimido; considerando la estructura del ovipositor, longiterebratus podría lle-

gar a considerarse sinón'mo de £. griseus si se encontraran records chilenos de

longiterebratus, esta especie ha sido colectada solo en la Patagonia Argentina.

Un especímen de la colección J. TT. Medina ha sido etiquetado y manuscri-

to por Philippi como: “Erax marginatus Ph.”, este es un nomen nudum.

Lochmorhynchus griseus (Guerin)

(Elgsi9203, 205,200, 2017 209/1219, el)

Asilus griseus Guerin, 1830, p. 292, Chile.

Erax griseus (Guerim). Macquart, 1938, p. 115, Chile; Blanchard, 1852, p. 369;

1854, Pl. 3, fig. 2 a b; Philippi, 1865, p. 692; Schiner, 1868, p. 180, Chi;e.

Lochmorhynchus griseus (Guerin). Engel, 1930, p. 460, fig. 3; Stuardo, 1946, p.

84; Hull, 1962, p. 496, figs. 206 A, 716, 1437, 1446, 2203 y 2217.

Erax cinereus Philippi, 1865, p. 693, Santiago, Colchagua.

Erax albescens Schiner, 1868, p. 180, Ch'le.

TYPO. 9, Chile, en el Museum National d'Histoire Naturelle, Paris (no vis-

to). Typo de E. cinereus en Museo Nacional de Histoia Natural, Santiago, Chi-

le (visto). Typo de E. albescens en el Naturhistorisches, Museum, Austria (no

visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo gris a café roj'zo; mystax bianco con gruesos pelos blan-

cos y negros entremezclados; fémures negros o rojizos; tibias y tarsos café roj'zos;

cerdas de las patas en su mayoría blancas; alas hyalinas, a lo largo de las alas

de color café; epandria terminan en una proyección distal (Fig. 263); ovipositor

negro brillante, cónico; procesos posteriores del tergite 9 agudos distalmente

(Fig. 265).

MACHO. (GS comparado con el typo). Cabeza en vista frontal: cara, frente y

vertex con micropubescencia blanca, menos densa entre el oce:larium y las ante-

nas, donde una depresión triangular luce negra o rojiza glabrosa; pelos fronta-

les negros y blancos en filas separadas; ocellarium negro con micropubescencia

blanca dispersa, ocelos amarillos; cerdas ocelares finas, negras, continuando detrás

del ocellarium como 2 filas cortas. Cabeza en vista lateral: giba facial luce negra,

con m'cropubescencia dorada dispersa en el borde oral, borde de los ojos y entre

las antenas y la giba facial; centro de la giba facial con densa micropubescencia

plateada; mystax de finos pelos blancos y 5-6 cerdas largas, gruesas, negras o

blancas a lo largo de los costados del borde oral; antenas en su mayoría negras,

primero y segundos segmentos con pelos cortos, blancos, mas abundantes en el

lado ventral; tercer segmento con micropubescencia plateada y dorada, stylo ne-

— 291 —

gro; barba blanca; área occipital cón micropubescencia blanca, mas densa en el

borde posterior de los ojos, vestidura de finos pelos blancos dispersos; cerdas

occipitales y postoculares gruesas, negras o blancas; proboscis negra brillante con

finos pelos largos y blancos en la parte basoventral, pelos cortos blancos en el

ápice; palpos maxilares café oscuros, con largos pelos blancos. Protórax negro,

desuniformemente cubierto de micropubescencia plateada y dorada, dispersa, y

largos pelos finos blancos o amarillentos; cerdas del collar negras o amarillentas.

Pleura toráccica negra o café oscura, en su mayor parte cubierta por micropu-

bescencia plateada o amarilla oscura y pelos blancos o amarillentos; cerdas mese-

pimerales finas, blancas o amarillentas. Mesonotum negro o café oscuro con mi-

cropubescencia gris o café oscura y cortos pelos negros dispersos, los cuales son

claramente mas largos en el área posterocentral donde unos pocos pelos blancos

o amarillentos aparecen entremezclados; pelos amarillos o blancos a lo largo de

los bordes laterales y alrededor y sobre los callos humerales y posteriores; scute-

llum uniformemente cubierto de largos y fimos pelos amarillos o blancos, entre-

mezclados con pelos negros del mismo largo, algunas veces los pelos están disper-

sos; 3-5 cerdas dorsocentrales negras ubicadas posteriormente; 3 cerdas notopleu-

rales negras o amarillas; 1 cerda intraalar negra; 3 cortas cerdas postalares ne-

gras; cerdas escutelares no definidas. Costados del postmesonotum cubierto de mi-

cropubescencia plateada o dorada. Alas hyalinas, fuertemente expandidas en el

área costal al nivel dei ápice de la celda discal (Fig. 267); celda subcostal an-

gosta, de color café oscuro denso en la parte expandida, membrana corrugada en

las celda marginales y submarginales, el resto de la membrana ligeramente ondu-

lada; venas café oscuras bordeadas de café. Coxas cubiertas de micropubescencia

plateada o café con unos pocos pelos y cerdas blancas o amarillas, los pelos son

mas abundantes en la parte anterior de las coxs frontales; patas de café rojizas

a negro brillantes, cubiertas de pelos cortos, finos y blancos, algunos erectos otros

deprimidos, cerdas cortas y blancas; parte ventral de los tarsos y del ápice de

las tibias con cerdas negras. Uñas negras. Abdomen cubierto de micropubescencia

blanquecina o calesosa, corrientemente mas densa en los segmentos 6 y 7 y en

la mitad posterior de los tergites 1 al 5, abdomen de apariencia bandeada en el

dorso; vestidura abdominal de finos pelos blancos, mas abundantes y largos en los

tergites 1-3; 2 a 3 cerdas negras o amarillas en cada costado del tergite 1; sterni-

te 8 con denso mechón de pelos blancos o amarillos. Genitalia negra brillante;

epandria con un proceso dorsal (Fig. 263), vestidura de pelos blancos o amarillos

dispersos con unos pocos pelos negros entremezclados; funda del pene como en

la Fig. 266.

HEMBRA. Semejante al macho pero sin expansión costal en las alas (Fig.

269); ovipositor cilíndrico, inciuye el segmento 8 el cual es negro brillante;

proyecciones lateroposteriores del tergite 9 mas largas que los cercos y termina-

das en fina punta (Fig. 265 y 273).

— 2025

MEDIDAS. Largo total 21.1 -29.0 mm., promedio 26.5 mm.; largo de ala

16.5 - 18.2 m., promedio 17.6 mm; ancho de ala 4.6 -5.8 mm., promedio 5.3 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 273,309 y 1 (gen. miss). ARAUCO: 19 Con-

tulmo, Mar, 8, 1906, Schonemann S. (BERL). BIO BIO: 4% 22 Bio Bio, 1928, E.

Reed (29 12 CAS; 27 192 INCO); 19 NO 30 bio Bio, 1928 (INCO); 1 192

NQ9 31 Mulchén, Ene., 1928, F. Ruiz (USNM); 17 329 Negrete, Bio Bio, Dic, 31,

OR EE MM. (GAS), CAUTEN: UG 2.0 Puerto Saavedra, Ené. 1,. 1963; Fetis

(INCO); 12 Temuco, Ene. 12, 1962, Fetis (INCO). CONCEPCION: 29 Con-

cepción, P. Herbst, 1904 (GAS); 1.9: Rio. Claro, 1928, E. P. Reed (CAS). GO:

QUIMBO: 19 Valle Elqui, Feb., 1963, Borniat (INCO). CURICO: 1¿Z lloca,

Rebsrazs 1950 (INCO); 1.2 Tonlemo, 359:09'-"710'41”, “Ene. - Feb., 1943, 12: E:

Peña (INCO). LINARES: 1gG Longaví, Schonemann (BERL); 13% Palqui, Li-

Mares, Feb. 5, 1957, A. Montero (CEE). MALLECO:-1 9 «La Fusta, Cord. Lon:

quimay, Feb.- Jun. 21, 1962, Peña (INCO). MAULE: 1% Maule, Rio Maule,

3001 Feb. 1956, L. Peña (BRAS). NÑNUBLE: -1, 7 Ñipas, Feb.:6,: 1950, “Ji

Dardel (INCO). O'HIGGINS: 19 Rancagua, Ene., 1909, E. P. Reed (CAS).

SANTIAGO: 192 Isla Maipo, Santiago, Toro (CEE); 1 129 Las Brisas, Santia-

go, Abril 10, 1955, L. E. Peña (BRAS); 192 Navidad (JIM); 2% Navidad,

Costa de Santiago, Feb. 2, 1955, L. E. Peña (INCO); 13 (gen. prep.) Santia-

go (INCO); 17 NO 8318 Santiago, Puelma (BERL); 19 Santiago, Dr. Puelma

(BERL). VALPARAISO: 13 El Tabo, Ene. 11, 1961, G. Pino (CEE); 13 (gen.

prep.) Quilpué, Mar. 1960, B. Laso (INCO); 137 Quillota, Feb., 1897 (INCO);

Ig 19 NO 37 Valparaíso, A. Faz (INCO); 1 Valparaíso, Dr. Reed (INCO);

23 29 Valparaíso, A. Faz (12 USNM; 23 192 CORN). Sin localidad ni fe-

cha: 1 (solo torax y alas) [typo de E. cinereus] (JIM); 13 NO 33 (INCO); 12

(INCO); 1% 12 Chile (BERL); 29 Chile, E. P. Reed (CAS); 17 N9 68 Chile,

Dr. Reed (CAS); 19 Chile, Eschsch S. (BERL); 1 Chile (USNM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 471.

DISCUSION. Los individuos grises generalmente tienen micropubescencia pla-

teada, pelos blancos y cerdas negras; los individuos tendientes al color café tienen

micropubescencia amarilla o café dorada, pelos amarillentos y varias cerdas bian-

cas o amarillas; el color de las patas, principalmente los fémures, son algunas

veces negruscos en los individuos café. Estas variaciones no son constantes, y mu-

chas veces están relacionadas con la edad, siendo los individuos mas jóvenes los

mas claros; los individuos de las localidades mas al norte del pais son también

mas claros. El typo es gris oscuro de acuerdo al color del individuo enviado por

el Dr. L. T'sacas comparado con el typo; en relación con el individuo comparado,

el Dr. Tsacas d. ce (en comunicación personal): “un de ceux - ci est identique a

E. griseus Guerin”.

— 293 —

Lochmorhynchus longiterebratus Macquart, de acuerdo con la descripción y

figura de Macquart (1850: 83, Pl. 8, fig. 7) puede ser sinónimo de griseus; esta

especie a sido anotada para Patagonia, Argentina. No he visto el typo; podría

ser un individuo café. El largo dado por Macquart: “3 1” (*) [8.4 mm] puede

ser un error de imprenta por que la escala presentada en la fig. 7 es de 14 1

[29.4 mm], lo que corresponde aproximadamente al largo total de un ejemplar

grande de hembra de E. griseus.

Lochmorhynchus puntarenensis Mn. sp.

(Eres: 12622095 2112206311)

TYPO. 9, Punta Arenas, Ene. 1953, J. Herrera; este especímen está deposi-

tado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a L. griseus, del cual se puede separar por los proce-

sos posterolaterales del tergite 9, los cuales en las hembras son redondeados

apicalmente (Fig. 272); mystax negro con pelos blancos entremezclados; cerdas

de las patas negras.

DESCRIPCION DEL TYPO (9). Cabeza en vista frontal: cara y frente cu-

bierta de micropubescencia plateada, menos abundante en la giba facial y en la

frente; pelos frontales negros; ocellarium semejante en vestidura a la frente, ocelos

amarillos; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral (Fig. 262): giba facial pla-

teada; mystax de pelos blancos y negros entremezclados, los pelos blancos mas des-

tacados en las partes superior e inferior; antenas negras con micropubescencia

plateada y dorada dispersa, primero y segundos segmentos con pelos negros, mas '

abundantes y largos en el primero; tercer segmento y stylo como en la Fig. 262;

barba blanca; área postocular cubierta de micropubescencia plateada y finos pelos

blancos dispersos; cerdas postoculares amarillas; 8 cerdas occipitales en cada lado

del vertex, 6 negras y 2 blancas; probosics negra brillante con pelos finos,

largos y blancos en la parte posteroventral, y pelos cortos amarillos en el ápice;

palpos maxilares café oscuros, pelos blancos en la mitad basal y negros en el

ápice. Protórax negro, desuniformemente cubierto de micropubescencia plateada

y dorada, y de finos pelos blancos dispersos, los cuales son amarillentos y mas

densos en el lóbulo protoráccico; cerdas del collar en su mayoría negras, unas

pocas blancas entremezcladas. Pleura toráccica negra, cubierta de micropubescen-

cia plateada y dorada oscura, vestidura de solo unos pocos pelos finos blancos

dispersos en los sclerites; cerdas mesepimerales amarillentas. Coxas semejantes en

covertura a las pleuras torácicas, pelos y cerdas blancas, pelos mas abundantes

(== lnea:

— 294 —

en el lado anterior de las coxas frontales; fémures negros con el borde apical ro-

jo oscuro, cubiertos por pelos blancos comprimidos, pelos largos erectos en la

parte ventral de los fémures anteriores, cerdas de los fémures, negras; tibias an-

teriores y medianas y todos los tarsos negros en la parte dorsal y café rojizo os-

curo en la parte ventral; tibias posteriores y todos los tarsos negros; vestidura de

las tibias y tarsos semejantes a los fémures. Uñas negras, quinto basal rojo. Meso-

notum cubierto de micropubescencia gris y dorada, excepto en las líneas centra-

les muy separadas; vestidura del mesonotum de pelos negros dispersos de tama-

ño medio, los cuales son mas largos en el área posterocentral; finos pelos blan-

cos en los callos humerales y en los bordes laterales y frontal; scutellum con m:-

cropubescencia gris y gruesos pelos negros dispersos en el centro, en los costados

pelos blancos, y 8 pelos blancos en cada costado del borde posterior luciendo

como cerdas scutellares; 6 cerdas dorsocentrales negras, ubicadas posterior a la su-

tura transversa; 2 cerdas notopleurales negras; 1 cerdas intraalar negra; 2 cerdas

postalares negras. Costado del postmesonotum con micropubescencia plateada.

Alas hyalinas, venas en su mayoría negras, café cerca de la base. Abdomen cu-

bierto de micropubescencia gris en el dorso y en los costado de los tergites con

una área de micropubescencia café, desde una vista dorsal luce bandeado; vesti-

dura del abdomen de cortos pelos negros dispersos en el dorsum y pelos blan-

cos en la parte ventral; pelos blancos mas largos en los costados del primer ter-

gite. Ovipositor cónico (Fig. 271), incluyendo el segmento 8, negro con finos pe-

los amarillos dispersos; proyecciones posterolaterales del tergite 9 redondeadas

apicalmente y extendidas mas allá de los cercos (Fig. 272).

MACHO. Semejante a la Q, genitalia según ilustración en Fig.. 263 b.

El nombre puntarenensis hace referencia a la localidad del typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 22.5 mm.; largo de ala 12.9 mm.; ancho

de ala 3.4 mm. Paratypos de similar tamaño.

MATERIAL EXAMINADO. 43 82. MAGALLANES: 39 Punta Arenas,

ae 1953, Je Herrera] GEE; 2-INCO); 43 5.9 Go. Castillo, Mar. 28, 1969, 78:

pena (2 9 Est. Exp. U. Ghile.33" +91 INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 431.

DISCUSION. El typo y los paratypos son casi idénticos.

— 295 —

LOCHYRUS An :cen:

TYPO DEL GENERO: Asilus crassus Brom'ey, 1932.

Cabeza en vista frontal tres - décimos mas ancha que alta; vertex profunda-

mente hundido; ocellarium de tamaño moderado, ocelos grandes. Cabeza en vista

lateral: área postocular un - tercio del ancho del ojo; giba facial fuertemente de-

sarrollada, ocupando cuatro - quintos de la cara; primer segmento antenal

una - y - media vez a dos veces el largo del segundo; tercer segmento :igetramente

comprimido, atenuado, dos veces el largo del segundo, con un microsegmento

cilíndrico, corto y angosto, que lleva un largo stylo con una espina terminal, el

largo del stylo es dos - y - media a tres veces el largo del segundo segmento. mys-

tax abundante, largo, denso, limitado a la parte anterior de la giba facial. Meso-

notum con líneas centrales y manchas laterales definidas; vestídura de pelos cor-

tos dispersos antes de la sutura transversa, los pelos son mas largos en el área

posterior a la sutura; 10-14 cerdas dorsocentrales gruesas y bien definidas. Scu-

telium con unos pocos pelos de mediano tamaño; 2-3 pares de cerdas scutellares.

Costados del postmesonotum con un grupo de pelos de tamaño mediano. Celdas

marginales y cuarta posteriores cerradas y pediceladas; R, y R, forman una or-

quilla casi simétrica; R, termina antes del ápice del ala, R termina detrás del

ápice del ala; celda anal cerrada cerca del borde del ala, corrientemente con

corto pedicelo; M, y m forman un ángulo de 909. Espina de la tibia frontal

ausente; fémures posteriores con una fila dorsolateral de 4-7 y una fial latero-

ventral de 6-10 cerdas spiniformes. Abdomen usualmente cilíndrico en los ma-

chos, en las hembras ligeramente atenuado. Alas de los machos más cortas que

el abdomen, algunas veces ligeramente más largas en las hembras. Genitalia de

los machos grande, en forma de clava, no rotada; epandria forman un forceps,

grande, entre ligera y moderadamente dilatado, con una emarginación y un pro-

ceso digitilorme en ei borde distal; hypandrium corto, con una emarginación

grande, rectangular, en el borde distal; gonopodos cortos, dilatados. Genitalia

de la hembra corta, ligeramente comprimida; tergite 8 atenuado distalmente, ter-

gite 9 corto, pequeño; sin espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 3 especies.

Este género está proximamente relacionado con Cratopoda Hull, del cual se

puede separar por la vestidura dei scutellum y la forma de la funda del pene.

En Cratopoda el scutellum está cubierto por dos mechones de pelos lanosos, que

dejan entre ellos un espacio desnudo; en Lochyrus los pelos del disco del scu-

tellum son finos, dispersos, no lanosos y uniformemente distribuidos; las fundas

de los penes se muestran en las Figs. 239, 243, y 244 para Cratopoda, y las Figs.

am Sly: 282 para Lochyrus.

— 296 —

El nombre Lochyrus hace referencia a la robustez del cuerpo Aoxvpos

poderoso).

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE LOCHYRUS

Tórax y abdómen uniformemente gris; genitalia del macho gran-

de, tan ancha como el primer segmento abdominal, epandrium

gro DOso (H12S: 219: 9280). e ccoiocacannadón: E. crassus (Bromley) n. comb.

Tórax y abdomen gris claro u oscuro con abundantes áreas do-

radas o café; genitalia masculina nunca más ancha que tres -

cuartos del ancho del primer tergite (Figs. 275 y 288) ............

Abdomen gris, con el área dorsal notoriamente café dorado os-

curo; la mayoría o todas las cerdas del mesonotum y de las

patas, negras; genitalia masculina en vista dorsal tan ancha

como el cuarto tergite abdominal, ápice del lóbulo distal in-

ferior de los epandria dirigido hacia atrás o ligeramente hacia

A O Ls fieziero me

Abdomen en su mayor parte café, desde una vista dorsal luce casi

negro; la mayoría o todas las cerdas del mesonotum y patas,

blancas; genitalia masculina en vista dorsal, tan ancha como el

séptimo tergite abdominal, ápice del lóbulo distal inferior de

los epandria dirigidos hacia la línea media (Figs. 275, 279)

O A o dd RO EE AIN a ROS, E. balmacedensis n.

Lochyrus balmacedens:is n. sp.

(Figs: 274, 275-277; 279, 416).

sp.

TYPO. ¿ de Balmaceda, Aysen, Ene. 17 -20, 1961, Peña; este especímen está

depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Similar a £. frezieri, del cual se puede separar por la genitalia

del macho más pequeña, la cual es tan ancha como el séptimo segmento, y los

ápices de los epandria que se oponen (Fig. 275); la mayoría o todas las cerdas

son blancas.

DESCRIPCION: DEL TYPO (3).

Cabeza en vista frontal; cara, frente y

vertex con micropubescencia p:ateada, menos densa sobre el ocellarium; ocelos

amarillentos; pelos frontales largos, megros; cerdas ocelares largas, megras, con

— 291 —

unos pocos pelos blancos entremezclados. Cabeza en vista lateral: giba facial gris

oscura; mystax de cerdas blancas, con unos pocos pelos negros entremezclados en

la parte superior; antenas negras, primero y segundos segmentos con pelos ne-

gros, mas largos en la parte ventral del primer segmento; barba de finos pelos

blancos; área postocular con micropubescencia amarillenta, vestidura de finos pe-

los amarillos, la mayoría concentrados cerca del borde de los ojos; cerdas postocu-

lares amarillas; 17-20 gruesas cerdas occipitales ordenadas en un grupo a cada

costado del vertex; proboscis negra, fina, larga, con pelos blancos en los tres -

cuartos basoventrales, con pelos cortos finos y amarillos en el ápice; palpos ma-

xilares negros, pelos negros, unos pocos pelos finos blancos están entremezclados.

Protórax negruzco, desuniformemente cubierto con micropubescencia plateada,

algunas áreas son en su mayor parte doradas, y finos pelos blancos dispersos;

cerdas del collar gruesas y amarillas. Pleura toráccica negra, desuniformemente

cubierta por micropubescencia plateada y amarilla; en la sternopleura y ptero-

pleura hay grupos de finos pelos largos blancos; cerdas mesepimerales finas, blan-

cas. Mesonotum desuniformemente cubierto por micropubescencia dorada y pla-

teada, excepto en las manchas laterales y en las líneas centrales (en parte) las

cuales lucen café oscuro; vestidura de cortos pelos negros, finos dispersos, más

largos cerca de la línea media detrás de la sutura transversa; scutellum similar

en covertura al mesonotum, vestidura de largos y finos pelos blancos uniforme-

mente distribuídos; cerca de 12 cerdas dorsocentrales mezcladas con pelos de largo

semejante, tres - cuatro de las cerdas ubicadas más posteriormente son blancas,

las cerdas restantes son negras; tres cerdas notopleurales, dos blancas, una negra;

2 cerdas intraalares blancas; tres cerdas postalares blancas; dos pares de cerdas

scutellares blancas. Costados del postmesonotum con micropubescencia amarilla

y finos pelos blancos. Alas hyalinas; venas negras, cafés en el área costal. Coxas

semejantes en covertura a las pleuras toráccicas, pelos y cerdas blancas. Los pe-

los son más abundantes en la parte anterior de las coxas frontales; fémures uni-

formemente negro brillantes, con pelos cortos, blancos y comprimidos, unos pocos

pelos más largos en las partes dorsal y ventral de los fémures anteriores; tibias

y tarsos semejantes en color y vestidura a los fémures, tibias anteriores ligera-

mente más claras; cerdas de las patas blancas. Uñas negras, cuarto basal rojo.

Abdomen cubierto de micropubescencia gris dorada; vestidura de pelos cortos,

blancos y comprimidos; una angosta línea café en la línea media de los tergites;

cerdas de los costados de los tergites en su mayor parte dirigidas lateralmente,

blancas; borde posterior del sternite 8 con una fila rala de pelos negros dirigi-

dos posteriormente. Genitalia (Figs. 274, 275, 279) en su mayor parte negra, en

algunas partes ligeramente rojiza, tan ancha como el segmento 7; ápice de los

epandria dirigidos hacia la línea media, enfrentándose uno al otro ¡funda del pe-

ne según se ilustra en las Figs. 276 y 277.

— 298 —

HEMBRA. Semejante al macho; ovipostor corto, pelos blancos, cortos y ama-

rillos en los cercos.

El nombre balmacedensis hace referencia a la localidad del typo.

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 29 AYSEN: 27 [Il typo] (1 gen. prep.)

Balmaceda, /19 40" "W. 450 55" =S., Aysen, Ene. 17-20, 1961, Peña (INGCO):

MAGALLANES: 29 Dos Lagunas, Magailanes, Ene. 22, 1966, T. Cekalovic

(INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 416.

DISCUSION. Un hembra tiene cuatro cerdas notopleurales café oscuras y los

pelos frontales entremezclados blancos y negros.

Lochyrus crassus (Bromley) n. comb.

(Figs. 278, 280 - 284, 286, 415)

Asilus crassus Bromley, 1932, p. 279, figs. 27 y 28, Concepción, Araucanía; Stuar-

day s1936,-p-85;5 Eull,,1962,:p. 545.

TYPO. G, Concepción, en el British Museum, Londres, Inglaterra (no visto).

Un ¿Z paratypo de Concepción, Dic. 26-28, F. £ M. Edwards (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo gr's; patas negras, extremo de los fémures rojos; genita-

lia de los machos muy grande, globosa, tan ancha como el primer segmento abdomi-

nal (Fig. 280); ovipositor como en la Fig. 283,

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara con micropubescencia menos densa en

la parte dorsal de la jiba facial, frente negruzca; ocelos amarillos; cerdas fronta-

les largas, entremezcladas blancas con negras; cerdas ocelares largas, negras, unas

pocas cerdas finas blancas entremezcladas. Cabeza en vista lateral: jiba facial de

apariencia gris; mystax de abundantes pelos largos y negros, gruesas cerdas blan-

cas entremezcladas; antenas negras, primero y segundo segmento con abundantes

pelos blancos y negros entremezclados; barba de densos pelos finos; área postocu-

lar desuniformemente cubierta de micropubescencia plateada, más densa en el

borde de los ojos, vestidura de fimos pelos blancos, en su mayoría concentrados

cerca de los bordes; cerdas postoculares negras; 6-8 cerdas occipitales ordenadas

en un grupo a cada lado del vertex; pelos del vertex largos, finos y blancos;

proboscis con pelos blancos en la mitad basoventral, en el extremo pelos cortos

amar'llos; palpos maxilares negros, pelos negros con unos pocos pelos blancos

entremezciados. Protórax negro con micropubescencia plateada, pelos largos, finos

y blancos; 5-7 cerdas negras en el collar, un grupo de 4-6 pelos negros en el

— 299 —

centro del pronotum. Pleura toráxica cubierta con micropubescencia plateada,

algunas veces ligeramente café en algunas áreas, pelos dispersos, finos, en su ma-

yoría blancos; cerdas mesepimerales finas y negras. Mesonotum cubierto de micro-

pubescencia plateada, en parte algo café, manchas laterales parcialmente cubiertas,

líneas centrales negras; vestidura de pelos negros, más largos en cada costado de

las cerdas dorsocentrales, unos pocos pelos finos, cortos en los callos humerales y

en el borde poste'or; scutellum semejante en cobertura al mesonotum, con finos

pelos blancos uniformemente distribuidos; 10-14 cerdas dorsocentrales negras;

corrientemente dos cerdas notopleurales negras, excepcionalmente tres o cuatro;

l cerda intraalar negra; 2 cerdas postalares negras; 2-3 pares de largas cerdas

escutelares negras y delgadas. Costados del postmesonotum con micropubescencia

plateada y café, y con pelos de mediano tamaño blancos y café. Alas (Fig. 286)

hyalinas, ahumadas en el ápice; venas negras, café oscuras en el área costal. Co-

xas semejantes en cobertura a la pleura toráxica, pelos blancos, más abundantes

en la parte anterior de las coxas frontales, corrientemente sin cerdas destacadas;

fémures negros, quinto apical rojizo, vestidura de pelos cortos y blancos, más

largos en las partes laterales y ventrales, con unos pocos pelos negros entremez-

clados; tibias café oscuras a negras, vestidura de pelos negros, blancos y amari-

llos, más largos en la parte ventral de las tibias mediana y anterior; tarsos seme-

jantes en color a las tibias, corrientemente más oscuros, cerdas de las patas ne-

gras. Abdomen uniformemente cubierto de micropubescencia gris; borde posterior

de los tergites algunas veces presentan color rojizo; vestidura de pelos cortos ne-

eros y blancos, dispersos, más largos en los sternites; cerdas de los costados de

los tergites negras; borde posterior del sternite 8 con densas filas de pelos blan-

cos o amariilos, de tamaño mediano, dirigidos posteriormente. Genitalia del ma-

cho (Figs. 2, 7, 8, 280) globosa, grande, tan ancha como el primer segmento abdo-

minal, negra, cubierta de pelos cortos amarillos; pelos más largos en la parte.

posterior de los epandria, de color negro; hypandrium según se ilustra en Fig.

284; funda del pene según se ilustra en Figs. 281 y 282).

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor según Fig. 283.

MEDIDAS. Largo total 21.0-25.2 mm. promedio 22.8 mm.; largo de ala

13.2 - 14.8 mm. promedio 14.2 mm.; ancho de ala 3.4- 3.9 mm., promedio 3.7 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 131Z and 749. ARAUCO: 13 Contulmo, Dic.

2, 1904, Schonemann S. (BERL); 13 Contulmo, Dic. 31, 1901, Schonemann S.

(BERL); 17 Contulmo, Dic. 22, 1904, Schonemann S. (BERL); 1g 19 Contulmo,

Dic., 1903, Schonemann S. (BERL); 19 Contulmo, Ene. 4, 1903, Schonemann S.

(BERL); 12 Contulmo, Oct. 9, 1903, Schoemann S. (BERL); 2% 12 Contulmo,

Dic. 20, 1904, Schonemann S. (BERL); 1% Contulmo, Dic. 6, 1904, Schonemann

S. (BERL); 23 Contulmo, Dic. 22, 1904, Schonemann S. (BERL); 3gZ Contul-

mo, Ene. 4, 1905, Schonemann S. (BERL); 1% Contulmo, Ene. 14, 1906, Scho-

— 300 —

nemann S. (BERL); 13 Contulmo, Abril 5, 1902, Schoenamnn S. (BERL); 1

Contulmo, Ene. 25, 1902, Schonemann S. (BERL); 192 Contulmo, Dic. 10, 1903,

Schonemann S. (BERL). BIO BIO: 19 Los Angeles, Feb. 20, 1962, Alister

(INCO); 13 Termas de Pemehue, Feb. 20, 1965, Mendez (INCO). CAUTIN:

IS Cerro Ñielol, “Temuco, Ene. 2, 1963, Fetis (INCO); 19 Loncoche, Ene. 2,

1962, H. M. Vargas (INCO); 13 Nueva Imperial, 1962, A. S. Huenuqueo

(INCO); 19 N9 522036 Temuco, Ene. 20, 1952, G, "Faure (USNM); 73 20 km.

E. "of Temuco, Cautín, Ene. 8, 1951, R. $ M. (CAS);:4S 19 20 Km. E: of Te-

muco, Ene. 7, 1951, R. £ M. (CAS). CONCEPCION: 1G Florida, camino a,

Dic5S 1957, JO. R.“(INCO); 13 20... Camino “a Eonguén; Dic. (20/1957;

POS REA(ENCO); 17" Camino «a Longuén, Dic. "241954; 0.0... (INCO);

1 N0 1175, 19 NO 1166, Concepción, Dic. 10, 1958, Alvarado (INCO); 1 Con-

Repción, Dic. 9, 1959; “Frank (ENGO); 2.71 9 "Concepción;. Oct. 16;:1957.;, JB:

(INCO); 19 Concepción, Ene. 18, 1958, J. O. R. (INCO); 12 Concepción,

De" 18/1962, Fetis (INCO)>3 3 52 Concepción, Ene., 1958, J. O: R.. (INCO);

29 Concepción, Dic. 23, 1957, J. O. R. (INCO);-1Z Concepción, Ene: 27,

SS JAHO ER. (INGCO)-1 3 Concepción, Dic. .30, 1957, -J..0-R (INCON*ES

Concepción, Ene. 4, 1958, J. O. R. (INCO); 13 Concepción, Nov. 25, 1962,

Mendez (INCO);' 1 *19 - Concepción, Ene. 15, 1958, .J. .O:-R:«(1NGO); 14

19 Concepción, Ene. 20, 1958, J. O. R. (INCO); 13 Concepción, Ene. 6, 1958,

NPSTRR(INGCO); 112,9 Concepción, Ene. 4,1958, ¿7,0 Bo (ANCONS

29 Concepción, Dic. 30, 1957, J. O. R. (INCO); 13 Concepción, Ene. 3, 1958,

J. O. R. (INCO); 13 Concepción, Schonemann S. (BERL); 1g Concepción,

icEES, 1957 JO. R. ([NCO); "1" (gen. prep:) 1 9 Concepción, . Ene: 1958;

RO ER (ANCO); Ll 9 "Concepción, Ene.“20,, 11958;+7::0., K.“INCO);: 1.4 Con;

cepción, Dic. 10, 1958, Caroca (INCO); 1 Concepción, Dic. 10, 1958, Alvarado

(INCO); 63 29 Concepción, Ene. 27, 1958, J. O. R. (INCO); 43 19 Concep-

Gn Ene 23) 19599, J:10 + (ENCO); 1.35 Concepción, Ene. 13, 1958, JAOTRE

(INCO); 13 Concepción, Dic. 27, 1957, J. A. C. (INCO); 1gZ (paratype) 19

Concepción, Dic. 26, 1926, F. £ M. Edwards (BRIT); 19 Chiguayante, Man-

quimávida, Ene. 7, 1962,, Méndez (INCO); 23 19 Florida, Dic. 15, 1957,

AO E (ENCO) 1 3 Florida, Dic: 15; 1962, Fetis" (INCO);:+1:< Florida; “Dre:

TIO TIO ARIMNENCO): 13 *Elorida,? Dic. 1941957. TEO Ro (INCONRAL AE

Florida; Dic. 15, 1962, T.. GC: :K.(NGCO); Lo Ta Florida, Dic. 15,*1957,) 20.08%

(INCO); 13 Ramuntcho, Nov. 20, 1959, Molina (INCO); 1% Rafael, Dic. 6,

1959, Rodrigo (INCO); 13 San Pedro, Nov. 26, 1956, Cid (INCO); 1gZ San

HedrariEne 29, 197 Ja Re (INCO); 3 20 «San: Pedro, Dic:o25,.' 1956;1 Grd

(INCO); 23 72 San Pedro, Nov. 19, 1956, Cid (INCO); 1% San Pedro, Con-

cepción, Ene. 9, 1958;.]. O: R. (INCO); 1, N0 1172, San<Pedro,: Ene: 10, 1958,

J:¿0:(UNCO); 2.3: San Pedro; Dic. 15, 1956, Cid. (INCO); 1. San: Pedro,

Nov. 24, 1956, Cid (INCO); 13 San Pedro, Nov. 19, 1956, Cid (INCO); 13

San Pedro, Dic. 3, 1956, Cid (INCO); 19 San Pedro, Dic. 3, 1956, Cid (INCO);

— 301 —

19 San Pedro, Dic. 3, 1956, Cid (INCO); 1% (gen. miss.) San Rosendo, Con-

cepción, Dic., 1926, R. £ M. Shannon (USNM). COLCHAGUA: 17 Nancagua,

Dic., 1944, L. E. Peña (INCO). CURICO: 19 El Coigo, Cord. Curicó, Ene.

1961, Peña (INCO); 17 Estero La Jaula, Los Quenes, Cord. Curicó, Ene. 4-18,

1964, L. E. Peña (INCO). LINARES: 13 Cord. Parral, Dic. 1-8, 1960, Peña

(INCO); 13 Longaví, Schonemann S. (BERL); 19 Los Canelos, 2000 m., Lon-

gaví, Schonemann S. (BERL);, 192 R. Perquilauquén, Parral, 500 m., Ene. 7,

1958, Peña - Barros (INCO); 13 (gen. prep.) Villegas, Cord. Parral, Dic. 1-8,

1960, Peña (INCO). MALLECO: 1 Angol, Malleco, Ene., 1954, L. E. Peña

(BRAS); 13 Angol, Dic. 10, 1940, R. Kening (USNM); 137 Angol, Marzo 6,

1941; P. A. Berry (USNM); 19: Angol, Dic. 23, 1926. (USNM); 19 Angol De

8, 1937 (USNM); 19 NO 53 Angol, Dic. 10, 1924 (USNM); 17 Angol, Nov. 19,

19356 (USNM); 13% Angol, Dic. 11, 1951 (USNM); LG Angol, Dic) 4 4M9S%

(USNM); 13 Angol, Nov. 25, 1936 (USNIM); 1 Angol, Dic. 9,1940 JB

ller (USNM); 13% Angol, Ene. 1, 1936, D. S. Bullock USNM); 13 Angol, Ene.

217 1937 (USNM); o Angol Dic. 5, 1954 (USNM); 1: Angol. Ene26 1195

(USNM); 13% Angol, Rere, OCT. 5, 1956, L. Bernedo (INCO); 137 Angol, Nov.

24, 1962, B. Bentau (INCO); 192 Angol, Dic. 10, 1960, Germán Hueras (INCO);

13 12 Angol, Nov. 11, 1960, A. Liengueo (INCO); 13 Angol, Dic. 1, 1961, L.

Sandoval (INCO); 19 Angol, Dic. 10, 1960, C. Bravo (INCO); 13 Angol, Dic.

1, 1960, C. García (INCO); 1 Angol, Nov. 28, 1961, J. Quilangueo (INCO);

192 Angol, Nov. 12, 1961, R. Romero (INCO); 17 Angol, Dic. 1, 1961, Agui-

lera (INCO); 13 Angol, 1962, Figueroa (INCO); 13 Angol, Nov. 8, 1958, J.

Hahn (INCO); 13 Angol, Dic. 1, 1961, Péndola (INCO); 3Z Angol, Ene. 1,

1951, KR. £ M, (CAS); 19 ¡Angol, Nov. 9, 1961,..A7 Mohr (INGO); 17 HAngol

Dic. 12, 1961, R. Cozo (INCO); 13 Angol, Nov. 25, 1960, Núñez (INCO); 1£ .

Angol, Feb. 12, 1962, R. (INCO); 19 Angol, Dic. 8, 1960, P. Sedano (INCO»;

13 Angol, Nov. 26, 1961, E. Riquelme (INCO); 17 Angol, Ene. 3, 1962, Figue-

roa (INCO); 12 Angol, Nov. 28, 1960, A. Morales (INCO); 17 Angol, Nov.

30, 1961, S. Qulatún (INCO); 192 Angol, Nov. 24, 1961, B. Bental (INCO);

13 Angol, Nov. 24, 1956, O. Fetis (INCO); 13 Angol, Dic. 5, 1959, A. Paredes

(INCO); 12 Angol, Nov. 29, 1958, O. Perry (INCO); 13 Angol, Dic. 13, 1961,

B. Bental (INCO); 1gZ Colipulii, Ene. 3, 1954, Méndez (INCO); 192 N9 1176

Collipulli, Ene. 20, 1958, J. O. C. (INCO); 23 22 (cópula), Collipulli, Feb.

22, 1964, Méndez (INCO); 1 (gen. miss.) NO 388 Angol, Ene. 1, 1924 (USNM);

13 10 mi. N. of Perquenco, Malleco, Ene. 6, 1951 (CAS); 19 Los Alpes, Feb.

19, 1961, J. Morales (INCO); 19 Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol, 1200 m.,

Ene. 3, 1951, R. £ M. (CAS); 13 Victoria, Dic. 30, 1919, F. Ruiz (INCO»;

19 NQ 34 Victoria, Dic. 30, 1929 (USNM). ÑUBLE: 1 Atacalco, Ñub:e, 600 m.,

Ene. 22, 1955 (BRAS); 1G (gen. prep.) Chillán. Dic. 26, 1961, "Trampas

(INCO); 19 Chillán, Ñuble, Dic., 1964, J. López (INCO); 19 Chillán, Ene.

9, 1962, Alister (INCO); 13 Chillán, Ñuble, Dic. 12, 1963, M. Figueroa (INCO);

— 302 —

Ig Chillán, Feb. 22, 1962, J. P. López (INCO), 12 Chillán, Dic. 18, 1961, J.

López (INCO); 19 Chillán, Ene. 14, 1962, J. López (INCO); 192 Ñuble, Marzo

29, 1964, J. López (INCO); 43 Nohueche, Ñuble, Dic. 15, 1953, L. E. Peña

(USNM); 17 Nohueche, Ñuble, Dic. 17, 1953, L. E. Peña (USNM); 1g 29

50 km. E. of San Carlos, Dic. 26, 1950, R. £ M. (CAS); 13 15 km. e. of San Car-

los, Dic. 23, 1950, R. € M. (CAS). O'HIGGINS: 192 Cortaderal, Feb., 1899,

Schonemann S. (BERL); 192 Cortaderal, Feb. 10-13, 1899, Schonemann S.

(BERL). SANTIAGO: 19 N 20312 137 El Canelo, Santiago, Ene., 1950 (9

BRAS; S MUNCH); 19 El Canelo, Santiago, Ene. 28, 1956, L. E. Peña (BRAS);

1g NO 23467 El Canelo, Santiago, Dic., 1951 (BRAS); 1 16 Perales, Santiago,

Dic., 1925 (USNM). TALCA: 19 Las Mercedes, Ene. 9, 1935, F. Ruiz (USNM);

VALDIVIA: 17 N9 20331 Panguipulli, Ene., 1945 (BRAS); 13 20332 Pangui-

pulli, Ene., 1945 (BRAS); 17 NY 20333 Panguipulli, Ene., 1945 (BRAS).

VALPARAISO: 1¿G S. Siope Bell Mtn., 300 ft., Dic. 17, 1950 (CAS). Sin locali-

dad ni fecha: 13 Chile, E. C. Reed (USNM); 23< (JIM); 13 N9 1167, Ene.

A IS JO. RO (INCO);:

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 415.

DISCUSION. Los especímenes engrasados lucen negros; en las hembras, las

patas son ligeramente más oscuras y algunas muestran pequeñas marcas rojizas en

los fémures. Dos machos de la colección J. “T. Medina tienen etiquetas manuscri-

tas de Philippi en la siguiente forma: “Asilus venator n. sp.”; este es un nomen

nudum.

Lochyrus frezieri n. sp.

(Figs. 285, 287 - 290, 485)

TYPO. ¿Z, de Caramávida, Arauco, Ene., 1-6, 1954, L. E. Peña; este especí-

men está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción, Chile.

DIAGNOSIS. Similar a L. crassus (Bromley), del cual se puede separar por el

cuerpo gris con grandes áreas de micropubescencia dorada en las pleuras toráxi-

cas, en el mesonotum y en el dorso del abdomen; la genitalia del macho es tan

ancha como el cuarto segmento abdominal, y el ápice del lóbulo inferior de los

epandria están generalmente dirigidos posterolateralmente (Fig. 288).

DESCRIPCION DEL TYPO. (G) Cabeza en vista frontal: cara, frente, y ver-

tex desuniformemente cubierto de micropubescencia plateada y amarilla, dispersa;

pelos frontales largos, negros; ocelos café claros; cerdas ocelares negras, abundantes.

Cabeza en vista lateral (Fig. 287): giba facial luce gris oscura; mystax de abundan-

— 303 —

tes pelos largos y negros, unos pocos pelos blancos entremezclados en el centro;

atnenas negras, primero y segundo segmentos con abundantes pelos negros de ta-

maño mediano, más largos en la parte ventral del primer segmento; barba de fi-

nos pelos blancos; cerdas postoculares negras; 13-16 cerdas occipitales negras y

gruesas, ordenadas en un grupo a cada lado del vertex; proboscis negra, con fi-

nos pelos blancos largos en los 3-4 pasoventrales, pezos cortos y amarillos en

el ápice; palpos maxilares negros con largos pelos negros en el ápice, la mayoría

de los pelos en la parte basal son blancos. Protórax negro, con micropubescencia

café, pelos finos, blancos, dispersos, más densos en el lóbulo pretoráxico; cerdas

del collar negras en el dorso, blancas en los costados. Pleura toráxica con densa

micropubescencia café, pelos largos, finos y blancos en las esternopleuras, ptero-

pleura, y metepisterna; cerdas mesepimerales café claro. Mesonotum cubierto de

micropubescencia dorada en los 3/ anteriores, en el 49 posterior la micropubes-

cencia es plateada, excepto sobre las líneas centrales y sobre las manchas latera-

les, las cuales lucen negras; líneas centrales divididas por una línea café oscura;

vestidura de pelos cortos y negros, dispersos, los cuales son más largos en la mi-

tad posterior del mesonotum, especialmente entre las cerdas dorsocentrales; scu-

tellum en su mayor parte cubierto por micropubescencia plateada, excepto en el

centro, vestidura de f'nos pe.os negros, de tamaño mediano, uniformemente dis-

tribuídos; 10 cerdas dorsocentrales negras y gruesas, detrás de la sutura transversa

hay una fila de 4-6 cerdas negras en la parte interior de las dorsocentrales y

d spuestas para.elamente; 2 cerdas notopleurales negras; 2 cerdas intralares ne-

gr s, 3 cerdas postalares negras, 1 más débl que la otra; 3 pares de largas cerdas

sc telares negras. Costados del postmesonotum con micropubescencia plateada y

finos pelos bancos de tamaño mediano. Alas hyalinmas, ahumadas en el ápice;

venas negras, café oscuras en el área costal. Coxas semejantes en cobertura a las

p“euras torácicas, pelos en su mayoría blancos, más abundantes en la parte ante-

rior de las coxas Irontales; fémures negros con un anillo rojizo oscuro antes del

ápice, vestidura de pelos blancos y negros entremezclados, largos en los fémules

frontales y en ¿os costados de los fémures medianos y posteriores, pelos en su

mayoría negros en los fémures posteriores; tibias café rojizas, ennegrecidas apical-

mente, vestidura semejante a los fémures pero menos abundante; tarsos negros;

cerdas de las patas negras, unas pocas más cortas y rojizas en los fémures media-

no y en las tibias. Uñas negras, abdómen cubierto de micropubescencia plateada,

distintamente café en el dorso de los tergites; vestidura de pelos negros y cortos,

más bien dispersos, más largos y blancos en el dorso de los tergites 1-3, en los

costados de todos los terg'tes, y en los esternites; esternite 8 con densos pelos ne-

gros y una fila de pelos blancos, densos, en el borde posterior, dirigidos poste-

r:ormente; cerdas en los costados de los tergites rojizo pálido. Genitalia (Figs.

288 y 290), vestidura de pelos cortos, blancos, entremezclados con algunos pelos

negros, más largos y más ralos; extremo del lóbulo inferior de los epandria lige-

ramente dirig do hacia afuera; funda del pene como en las Figs. 285 y 289.

— 304 —

HEMBRA. Semejante al macho; los últimos tres segmentos abdominales con

gruesos pelos megros; ovipositor corto, con cortos pelos amarillos en los cercos.

Esta especie es dedicada a Francisco A. Frezier, naturalista francés que visitó

Chile en 1712.

MEDIDAS. Largo total 13.2 -21.8 mm., promedio 18.5 mm. [typo 18.9 mm.];

largo de ala 9.3-13.5 mm., promedio 11.9 mm. [typo 12.2 mm.]; ancho de ala

2.4-3.7 mm. [typo 3.4 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 463 y 479. ACONCAGUA: 12 Río Blanco,

Dic. 6, 1917, P. Hernst (INCO); 192 Río Blanco, Aconcagua, Dic. 5-8, 1961, Peña

(INCO). ARAUCO: 1gZ 29% Butamalal, Cord. Nahuelbuta, 1100-1400 m.,

Arauco, Ene. 23-31, 1954 (1 USNM; 192 INCO; 12 OTT); (tipo) Caramá-

vida, Arauco, Ene. 1-6, 1954, L. E. Peña (INCO); 1% Caramávida, Arauco,

Dic. 31, 1953, L. E. Peña (OTT); 1,19 «Aíto de .Caucupil, 1300: m., Arauco,

Ene. 8, 1954, L. E. Peña (INCO); 192 Contulmo, Dic. 22, 1904, Schonemann S.

(BERL); 12 Contulmo, Dic. 17, 1903, Schonemann S. (BERL); 12 Contulmo,

Ene. 4, 1903, Schonemann S. (BERL); 19 Peillén - Pilli, Cord. de Nahuelbuta,

600-800 m., Arauco, Ene. 13, 1954, L. E. Peña (INCO); 23 29 Pichinahuel,

FAncO, 1200;m., Feb., 1956, L. E. Peña (1 19 INCO;'1S 19 BRAS); 4%

29 Pichinahuel, Cord. Nahuelbuta, 1100 - 1400 m., Arauco, Ene. 31, 1954 (23

19 OTT; 27 CEE; 1g 19 INCO); 19 Piedra del Aguila, Cord. de Nahuel-

buta, Feb., 1963, Peña (INCO). BIO BIO: 19 El Abanico, BIO BIO, Dic. 30,

STRESS ME (ENCO). 1: Hhonqu:may, Ene. 9, 1962, Bena (GEE). GCAUTEN:

OSLO nn. “Es of Pucón, Ene. 12, 1951, K.'%* M. (1 INCO; 13 Cas

13 10 mi. N. W. of Villarrica, Ene. 10, 1950, R. £ M. (CAS). CONCEPCION:

13 Concepción, Feb. 25, 1962, Méndez (INCO); 17 Hualpén, Feb. 19, 1960, F.

Méndez (INCO). COQUIMBO: 19 50 mi. W. of La Junta, Coquimbo,

ROISINENCAS) TG "20 mu: E. ot La Serena, Dic. 3, 1950, R.'£- "M. (CAS)

COLCHAGUA: 129 Nilahue, Ene. 1, 1950, Peña (INCO). CURICO: 1G Cubi-

llos, Cord. Curicó, Ene. 24-26, 1961, Peña (INCO); 23 29 El Coigo, Curicó,

ERES MOD Pena (INCO); 2.3" El Corgo, Curico, Ene. 11-31, 1960, L. E. Peña

(13 INCO; 17% USNM); 1 29 El Coigo, Curicó, Feb., 1961, Peña (INCO);

lg 19 El Coigo, Curicó, Oct. - Nov., 1959, Peña (INCO); 17 Río Colorado,

Cord. Curicó, Ene. 6-8, 1960, L. E. Peña (USNM). LINARES: 237 Bader von

Longaví, Parral, Ene. 6, 1899, Schonemann S. (BERL); 23 Cord. Parral, Dic.

1-8, 1960, Peña (INCO); 1% 12 Fdo. Malcho, Parral, Dic., 1959, L. E. Peña

(INCO); 2 Fdo. Malcho, Parral, Ene., 1957, L. E. Peña. (INCO); 19. Las

Cruces, Cord. Parral, Marzo, 1959, Peña (INCO); 1% 19 Parral, Dic., 1898,

Schonemann S. (BERL). MALLECO: 19 Aito Nahuelbuta, Arauco - Malleco,

00m. Ene. 0,1994 E. 'E. Pena (OTI); ES, 109” Rio Blanco, Malleco,

SU =1IS00s Feb: 21 2419981. “E, Pena (19 INGCO; “1 OTD)>"LS 20

Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol, 1200 m., Ene. 2, 1951, R. 2 M. (CAS); 1G

— 305 —

19 (cópula) Termas de Río Blanco, Malleco, Etcheverry (INCO). ÑUBLE: 1¿g

Baquedano, Yungay, Feb. 6-9, 1957, Aguilera (INCO); 19 Caramávida, 1000

m., Ñuble, Ene. 1-9, 1954, L. E. Peña (BRAS); 192 Cherquenco, Ñuble, Feb.

1, 1954, L. E. Peña (BRAS); 13 Fdo. El Castillo, Cord. Chillán, Dic. 13, 1964,

L. E. Peña (INCO); 192 Las Cabras, Cord. Chillán, 1500 m., Ene. 6-31, 1963,

L. E. Peña (INCO); 6% (1 gen. prep.) 59 50 km. of San Carlos, Ñuble, Dic.

26, 1950, R. £ M. (32 1 INCO; 5 29 CAS); 19 Termas de Chillán,

Ñuble, 1300-1900 m. Ene., 1955, L. E. Peña (BRAS). SANTIAGO: 1¿Z Isla de

Maipo, Ene. 16, 1952, Franck (INCO); TALCA: 13 12 Fdo. Radal, Cord. Tal-

ca, 2500 m., Ene. 5-8, 1951, Peña - Barros (INCO). VALDIVIA: 19 Enco, Valdi-

via, 120-700 m., Feb. 26, 1955, L. E. Peña (BRAS); 29 Panguipulli, Engesser

S. V, (INCO). VALPARAISO: 17 La Cruz, Marzo 5, 1954, A. Silveira (BRAS).

Sin localidad ni fecha: 192 (JUM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 485.

DISCUSION. Una 2 de la colección J. T. Medina tiene una etiqueta manus-

crita de Philippi en la siguiente forma: “Asilus annulifer Ph. n. sp.”; este es un

nomen nudum.

LYCOMYIA Bigot

Lycomya Bigot, 1857, 288.

Lycomyia, Kertesz, 1909, p. 208 (enmendado); Hull, 1962, p. 535.

TYPO DEL GENERO: Lycomyia germainú Bigot, 1857, por monotipía.

Cabeza en vista frontal 1/3 más ancha que alta; vertex muy hundido, bordes

más o menos paralelos; ocellarium elevado, grande, unas pocas cerdas ocelares

cortas, ocelos grandes. Cabeza en vista lateral (Fig. 292): área postocular 1/10

del ancho del ojo; cara plana, ligeramente abultada en el borde oral; proboscis

deprimida en el cuarto apical; antenas largas, tan largas como el alto de los ojos;

primer segmento antenal tres veces el largo del segundo; tercer segmento antenal

muy largo, 1 y 1/2 a 2 veces el largo de los dos primeros combinados, ligeramen-

te atenuado en el ápice, suavemente comprimido, con un microsegmento corto y

cilíndrico y con un stylo de 3 veces su largo, el cual termina en una corta espina

apical; mystax reducido al borde oral. Mesonotum sin manchas definidas; vesti-

dura de unos pocos pelos débiles y cortos; 4-5 cerdas dorsocentrales, semejantes

a los presentes en el área. Scute:lum con unos pocos pelos débiles, cercanos a la

fila formada por 2-3 pares de cerdas scutelares. Costados del postmesonotum con

un grupo de pelos finos de tamaño mediano. Celdas marginal y cuarta posterior

cerrada y pedicelada; R, alcanza el borde del ala antes del ápice; R; y R, lis

alineadas, terminando en el ápice del ala; celda anal cerrada con un corto pedi-

— 306 —

celo; M, y base de m forman un ángulo de 909. Esp'na de las tibias frontales

ausente. Abdómen largo, delgado, más o menos cilíndrico; 4-6 cerdas en los cos-

tados de los tergites. Alas corrientemente alcanzan el extremo del abdomen. Ge-

nitalia del macho de tamaño moderado, no rotada, tan ancha como el segmento

precedente; hypandrium corto; epandrium de largo moderado con 2 emarginacio-

nes distales y 2 procesos digitiformes doblados en 909 hacia la línea media; go-

nopodos cortos, con un largo d'stistylus. Genitalia de la hembra corta, cónica,

incluye el segmento 8; sin espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 1 especie, Lycomyia germainiú Bigot.

Durante bastante tiempo han existido dferencias de opiniones concernientes

a la posición del género Lycomyia; Carrera (1948: 423 - 426) lo ubicó en la sub-

familia Asilinae, y Hull (1962: 535) siguiendo la recomendación de Carrera lo

ubica también en esta subfamilia a pesar de la gran relación que exíste entre la

morfología de este género y los géneros de Laphriinae. Este género se debe man-

tener en la familia Asilinae considerándose que pudiera constituír una conexión

filogenética entre Asilinae y Laphr'inae.

Lycomyia germaintú Bigot

(Eigs. 2912957 297, 409)

Lycomya germainú Bigot, 1857, pp. 290 - 291, Pl. 6, fig. 3 a-b, Chile.

Lycomyia germain:i Bigot. Osten Sacken 1891, p. 419, Chile, Argentina; Schiner

1891, p. 419; Kertesz 1909, p. 208, Chile, Argentina; Bromley, 1932, p. 269;

Stuardo, 1946, p. 84; Carrera £ Vulcano, 1961, p. 76, Parque Nac. Lenin, Pu-

cara, Argentina; Hull, 1962, p. 536, figs. 367, 754, 1402, 1411, 1566, 2197, 2289,

2358 and 2504.

Lycomyia germaini Bigot. Philippi, 1865, pp. 694-695; Schiner, 1866, p. 706,

Chile; 1868, p. 169, Ch'le; Carrera 1948, p. 424 - 427, fig. 1-2, Valdivia, Pan-

guipulli.

TYPO. Z, N9 214, Coll. Bigot, Type Dip: 227 1/4, es designado en el pre-

sente trabajo como lectotypo; el lectotypo y los 3 cotypos restantes (paralectotypos)

están en el Hope Department of Entomology, Oxford University, Inglaterra.

DIAGNOSIS. Cuerpo largo; tórax y patas negruzcas; abdomen rojo; tercer seg-

mento antenal largo; cara dorada; mystax y pelos de las coxas amarillentos; pelos

del abdómen rojizos; cerdas del notum negras; alas hialinas, ahumadas en el áp:ce;

genitalia semejante en co:or al abdómen.

DESCRIPCION DEL LECTOTYPO. (G) Cabeza en vista frontal: cara y fren-

te con densa micropubescencia dorada, excepto alrededor de la base de la antena,

— 307 —

más rala en la frente; 3-4 pelos frontales negros; ocelos amarillos; cerdas ocelares,

cortas, débiles, negras fuertemente proclinadas. Cabeza en vista lateral (fig. 292): ca-

ra dorada, más oscura en la mitad basal; mystax de densa cubierta pilosa blanca;

antenas café oscuro, primero y segundo segmentos con cortos pelos negros; barba

escasa. Pelos cortos y negros en el borde ventral de los ojos y pelos amarillo

café en la parte interior del área postocular; área postocular cubierta por mi-

cropubescencia, la cual es amarilla alrededor del forámen magnum, plateada a

lo largo del borde de los ojos y negra entre los ojos, vestidura de cortos pelos

dispersos, finos y negros; cerdas postoculares negras; 4 cerdas occipitales negras,

entremezcladas por unos pocos pelos finos más cortos; proboscis negra, con finos

pelos blancos, dispersos, de tamaño mediano en la parte basoventral, pelos cortos

y amarillos en el ápice; palpos maxilares negros con pelos negros. Protórax café

con pequeñas áreas cubiertas con micropubescencia dorada oscura, pelos cortos

débiles y dispersos; cerdas del collar negras. “Tegula toráxica café oscuro brillante;

3 pelos largos cafés en el metepisterna; 4 cerdas mesepimerales largas y cafés y

un mechón de pelos negros sobre las cerdas. Mesonotum negro con unas pocas

áreas cub'ertas por débil micropubescencia plateada en los bordes frontal y pos-

terior, vestidura de unos pocos pelos cortos y negros; en vista lateral se distin-

guen algunos espacios cubiertos con micropubescencia dorada en el área central

del mesonotum; 5 cerdas dorsocentrales negras; 3 largas cerdas notopleurales ne-

gras; 4 cerdas intraalares negras, 3 agrupadas más juntas, 1 separada de. resto;

3 cerdas postalares negras; 2 pares de cerdas scutelares café rojizas. Costados del

postmesonotum con micropubescencia plateada y pelos finos, dorados de tamaño

mediano. Alas (Fig. 297) hyalinas, ahumadas en el tercio apical; venas café oscu-

ras. Coxas café oscuras con pelos y cerdas blancas, más abundantes en la parte

anterior de las coxas frontales, peos escasos en las coxas posteriores; fémures,

tibias y tarsos café oscuros, los fémures son algo más claros en la parte ventral;

vestidura de las patas formada por cortos y fimos pelos amarillos, comprimidos,

menos densos en la parte ventral de los fémures, cerdas negras, unas pocas cer-

das café rojizas oscuras en los fémures. Uñas negras. Abdómen rojo; borde ante-

rior del primero y segundo tergite negro, con una gran mancha triangular de

densa micropubescencia plateada en la parte anterior dei segundo tergite; vesti-

dura de pelos roj/zos, de tamaño mediano, comprimidos, las cerdas son rojizas;

sternite 8 con dos mechones de pelos rojos dirigidos ventralmente. Genitalia (Figs.

291 y 294) semejante en color a los tergites, vestidura de pelos cortos y negros;

funda del pene según se ilustra en fig. 293.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor como en las figs. 294, 295, con pe-

los semejantes a los del abdómen.

MEDIDAS. Largo total 23.0 - 32.2 mm., promedio 26.5 mm. [lectotypo 23.2m.|;

largo de ala 16.1-22.5 mm., promedio 19.8 mm. [lectotypo 16.2 mm.]; ancho de

ala 2.9-4.5 mm.; promedio 3.1 mm. [lectotypo 2.9 mm.]

—:308 —

MATERIAL EXAMINADO. 20% y 219 ARAUCO: 19 Caramávida, Arau-

co, Dic. 31, 1953, L. E. Peña (OT'T); 1? Contulmo, Feb. 19, 1904, Schonemann S.

(BERL); 23 Contulmo, Dic. 19, 1903 (BERL); 194 Contulmo, Nov. 29, 1903,

schonemann S. (INCO); 137 Contulmo, Dic. 15, 1904, Schonemann S. (INCO);

23 Peiilem - Pilli, Crd. Nahuelbuta, Arauco, 600 - 800 m., Ene. 13, 1954, L. Peña

IENINCO) CAUTIN" TG 10" mi. N. E. “Pucón, Ene. 12, 1951, R. E "M

(INCO); 13 Temuco, Marzo 8, 1965, O. Fetis (INCO); 19 Villarrica, Feb. 26,

1960, Fetis (INCO). CONCEPCION: 1 San Pedro, 1956, Cid (INCO). CURI-

CO: 13 Curicó, Ene., 1937, Dr. Reed (CAS); 12 El Coigual, Curicó, Ene.

20 - 26, 1964, Peña (OT T). MALLECO: 13 N9 151 Angol, Ene. 9, 1926 (USNM);

12 Angol, Dic. 20, 1937, D. S. Bullock (USNM): 13 Angol, Nov. 1940, P. E.

Berry (USNM); 19 Angol, Dic. 31, 1950, R. £ M. (CAS); 19 Angol, Nov. 50,

1956, Fetis (INCO); 1 2 Angol, Nov. 7, 1960, S. García (INCO); 1 (gen. prep.)

Angol, Oct. 10, 1959, B. Carvallo (INCO); 17 Purén, Ene. 15, 1902, Schonemann

S. (BERL); 19 Río Blanco, Curacautín, Feb., 1943, Peña (INCO); 137 Termas

Río Blanco, Malleco, Herrera (CEE). ÑUBLE: 1gZ Chiilán, Dic. 18, 1962,

Behn (INCO); 13 Las Trancas, Cord. Chillán, 1200 m., Feb. 23-30, 1956, L.

E. Peña (INCO). OSORNO: 19 Pto Octay, Feb. 12, 1957, Oherens (INCO»y;

1 Osorno, Río Col - Gol, 300 m., March 13-19, 1955 (BRAS). SANTIAGO:

13 N0 4 Pichibureo, Ene., 1925, F. Ruiz (INCO); 13 Santiago (INCO); 19

Santiago, A. Faz (USNM); 17 Santiago, Feb. 9, 1900, Schonemann S. (BERL).

VALDIVIA: 1 (gen. miss.) Panguipuili, Engener S. V. (BERL); 12 N9 111.201

Panguipulli, Valdivia, Ene. 1944 (BRAS); 137 Puerto Fue, Cord. Valdivia,

600 - 800 m., Marzo 4, 1955, L. E. Peña (INCO). VALPARAISO: 19 Valparaíso,

E. P. Reed (CAS). Localidad incierta: 1 (gen. miss.) Rofuco, Ene., 1930, F.

Ruiz (USNM). Sin localidad ni fecha: 13 [lectotypo] 32 [paralectotypos] 214 en

Coll. Bigot, Typo Dip..: 227 1/4, 227 2/4, 227 3/4 (OXF).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 409.

PRESAS. Pompilidae (Hym.) (Carrera £ Vulcano, 1961: 76)

DISCUSION. La mayoría de los especímenes estudiados tienen el tórax negro,

y las patas oscuras, casi megras, con la parte ventral de los fémures más claros;

algunas veces los fémures son visiblemente más claros en la parte ventral.

— 309 —

MALLOPHORA Macquart

Mallophora Macquart, 1934, p. 300; Hull, 1962, p. 467 - 468; Cole £ Pritchard,

1964, p. 43-51.

TYPO DEL GENERO: Asilus bomboides Wiedemann, 1821, designado por Co-

quil'et, 1910.

Cabeza en vista frontal, 2/5 más ancha que alta; vértex profundamente hun-

dido; ocellarium pequeño, bajo; ocelos pequeños. Cabeza en vista lateral: área

postocular 1/5 dei ancho del ojo; cara plana, fuertemente proyectada cerca del

borde oral; antena larga, tercer segmento fusiforme, más largo que los dos ante-

riores combinados, con un largo stylo terminal, más largo que el tercer segmento,

con una espina coria en el ápice; mystax ocupa la mitad de la cara, compuesta

de gruesas cerdas cerca del borde oral y pelos más cortos y ralos en la parte su-

perior. Mesonotum uniformemente coloreado, sin manchas; vestidura mesonotal

de pelos cortos y ralos; mesopieura con un proceso subalar puntudo, bien desa-

rrollado (Fig. 300). Scutellum con abundantes pelos largos y densos, dirigidos

dorsalmente; cerdas scutelares no definidas. Costados del postmesonotum con

micropubescencia o pelos. Celda marginal cerrada con un corto pedicelo; cuarta

celda posterior cerrada con un largo pedicelo; R, y R, conectadas por una o dos

venas transversales que permiten formar una tercera o cuarta celda submarginal;

R, termina antes del ápice del ala, R, después del ápice del ala; celda anal cerrada

y pedicelada; M, y m forman un ángulo de 1109. Espina de las tibias frontales

ausente; uñas romas en el ápice. Abdomen corto, ancho, atenuado, con abundante.

cubierta pilosa. Alas se extienden más allá del término del abdomen. Genitalia

del macho pequeña, rotada; hypandrium corto; epandria en forma de forceps,

moderadamente alargados, ligeramente atenuado. Ovipositor comprimido, sin

espinas.

DISTRIBUCION. Neartica, Neotropical, 112 especies; 1 especie en Chile, Ma-

llophora freycineti Macquart.

Mallophora freycineti Macquart

(Figs. 296, 298 - 300, 413)

Mallophora freycineti Macquart, 1938, p. 85, Brasil; 1846, p. 77, Nueva Granada,

Colombia; Walker, 1855, p. 579, Brasil; Williston, 1901, p. 319; Aldrich, 1905,

p. 278; Bromley, 1934, p. 348; James p. 53, Honduras; Huil, 1962, p. 469; Mar-

tin; 19650; post

— 310 —

TYPO. 92, Brasil; posiblemente en el Museo Nacional de Historia Natural,

Paris, Francia, pero de acuerdo con Martin (1965 : 34) no ha sido posible en-

contrarlo en dicho Museo (mo visto).

DIAGNOSIS. Individuos grandes y gruesos; abundante cubierta pilosa negra;

con una línea de pelos blancos en el borde ventral de los ojos, más abundantes y

largos en los machos; con unos pocos pelos blancos entremezclados en el mystax

dominantemente negro; pelos occipitales en su mayoría amarillentos; palpos maxi-

lares con pelos largos y blancos en la parte basoventral del segmento apical, más

vis:ble en los machos.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y frente negra brillante, con una línea

de micropubescencia plateada o dorada a lo largo de los bordes de los ojos con

la cara; mystax de pelos setiformes negros y ralos, más abundantes cerca del bor-

de oral, con unos pocos pelos blancos entremezclados en el centro del mystax,

algunos cortos pelos blanquecinos, dispersos, en la parte dorsal del mystax, cerca

de la base de las antenas; cerdas frontales cortas, amarillas, ubicadas cerca de los

bordes de los ojos; ocellarium negro, ocelos café claros; ocellarium con abundantes

pelos cortos y amarillos dirigidos en forma radial. Cabeza en vista lateral (Fig.

296): cara negra brillante; antena negra, primero y segundo segmentos con unos

pocos pelos negros y cortos; barba de abundantes y densos pelos blancos en la

parte anterior y de pelos negros en la parte posterior; área occipital negra con

una ancha línea blanca en el borde posterior de los ojos, vestidura de finos pe-

los negros en el centro y de pelos blancos en el borde de los ojos y detrás del

ocellarium; cerdas occipitales negras, ubicadas en grupos de 3-4 en cada lado

del vertex; proboscis negra br:llante con largos pelos negros en la parte basoven-

tral y pelos cortos amar:llos en ei ápice; palpos maxilares café oscuros con abun-

dantes pelos cerdosos negros, pelos blancos en la parte basoventral del segmento

apical. Protórax negro con abundantes pelos finos y negros; 4-6 pares de cerdas

negras en el collar. Pleura toráxica negra, con micropubescencia café oscura en

los bordes de los esclerites y con pelos finos y negros; cerdas mesepimerales finas,

abundantes, densas, negras. Mesonotum de aspecto aterciopelado negro, con pelos

cortos, negros, dispersos, más largos a lo largo de los bordes; callos posteriores

y humerales café oscuros; scutellum negro cubierto de densos pelos negros largos;

3 cerdas notopleurales cortas y negras; 3 cortas cerdas intralares negras; 2 cerdas

postalares negras. Costados del postmesonotum con micropubescencia café oscura

entre el postmesonotum y el mesepimerón. Alas (Fig. 298) café oscura, más os-

cura en el borde costal y cerca de la base, corrientemente con reflejos purpú-

reos en las áreas oscuras. Patas café oscuras, fémures posteriores más delgados que

los fémures frontales y medianos; tibias posteriore más gruesas que las tibias

frontales y medianas; fémures con abundantes cerdas negras, más abundantes en

los fémures medianos; fémures y tibias cubiertos con abundantes pelos finos y

— 311 —

negros, más largos y más densos en las tibias posteriores; tarsos semejantes en

vestidura a las tibias. Uñas romas (F'g. 299), negras. Abdómen negro, cubierto

por abundantes pelos negros, más largos en las partes laterales y ventrales. Geni-

talia negra con pelos negros.

HEMBRA. Semejante al macho; pelos blancos de la cabeza menos abundantes

y menos destacados; ovipositor corto, segmento 8 pequeño, cónico, segmento 9

diminuto, con cortos pelos amarillos.

MEDIDAS. Largo total 24.0-27.0 mm., promedio 25.5 mm.; largo de alas

25.0 - 27.: mm., promedio 25.8 mm.; ancho de alas 8.0 - 9.0 mm., promedio 8.3 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 23 39. Brasil: 17 NO 851 Barneri, Marzo 20,

1955, K. Lenko (BRAS); 137 Barneri, Ene. 6, 1955, K. Lenko (BRAS); 29

NQ 21298 y 21299, Est. S. Paulo, Llaporanga, N. B. Anton:na, Barreto Col. (BRAS).

Chile, TARAPACA: 19 Azapa, M. Etcheverry (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. De Honduras a Brasil y norte de Chile

(Fig. 43).

DISCUSION. Esta es la primera referencia de Mallophora en Chile. Esta es-

pecie sale junto con Mallophora nitidula Hermann en la clave de Curran (1934)

para especies neotropicales de Mallophora en el American Museum of Natural

History.

Hull (1962: 469) considera a M. freycineti como sinónimo de M. infernalis

Wiedemann (1821).

MEGAMETOPON n. gen.

TYPO DEL GENERO: Asilus occidentalis Philippi, 1865.

Cabeza en vista frontal 1/6 más ancha que alta; vertex profundamente hun-

dido; ojos bastante juntos por sobre el ocellarium, dejando entre ellos una sepa-

ración más angosta que el ancho del centro de la frente; ocellarium grande,

ocelos grandes. Cabeza en vista lateral: área postocular 1/6 del ancho del ojo;

jiba facial prominente, ocupando 3/4 de la cara; cerdas occipitales abundantes,

dobladas, forman un ángulo recto; segundo segmento antenal la mitad del largo

del primero; tercer segmento antenal 1/4 más largo que el primero, comprimido,

atenuado hacia el ápice, con unos pocos pelos cortos en el borde dorsal; un stylo

terminal bastante grueso, ligeramente atenuado, el cual es 3/4 del largo del ter-

cer segmento y lleva una corta espina apical; mystax compuesto de peos cerdo-

sos, largos y gruesos, los cuales nacen del área de la jiba facial. Mesonotum ele-

812

vado a lo largo de la línea media; líneas centrales y manchas laterales presentes;

vestidura de abundantes pelos largos, más largos a lo largo de la línea media de-

trás de la sutura transversa; 7-12 cerdas dorsocentrales bien definidas. Scutellum

con largos pelos, ralos, dirigidos dorsalmente, 3-4 pares de largas cerdas escute-

lares. Costados del postmesonotum con micropubescencia, la que a menudo seme-

ja un vello corto. Ce:das marginales y cuarta posterior cerradas y pediceladas;

R, y R;, paralelas a lo largo de gran parte de su recorrido; R, angulada en la

base, con una vena trunca que a menudo es poco definida y a veces falta; R,

alcanza el borde dei ala ligeramente antes del ápice del ala, R, alcanza el borde

del ala detrás del ápice; celda anal cerrada cerca del borde del ala, corriente-

mente con un pedicelo muy corto; M, y m forman un ángulo de 900-1009.

Espina de la tibía frontal ausente; sin cerdas en los fémures anteriores. Abdómen

algunas veces desde la mitad posterior del segundo segmento. Alas corrientemente

alcanzan el extremo del abdómen. Genitalia masculina pequeña, no rotada; hy-

pandrium corto; epandrium de tamaño moderado, ligeramente comprimido en el

tercio terminal; gonopodos cortos, globosos. Ovipositor largo, puntudo, fuertemen-

te comprimido en forma de sabe, incluye los segmentos 6 - 9; sin espina en el ovo-

positor, pero con una simple fila de cerdas cortas, semejante a espinas en el

borde ventral del tergite 9.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 2 especies.

Este género es próximo a Nestotes, n. gen. del cual puede ser separado por

la base angulada de R, y por el primer tergite entero; en Nesiotes, R, es sua-

vemente curvada en su origen y el primer tergite tiene una bien definida depre-

s:ón en la línea medio dorsal (Fig. 345).

El nombre Megametopon se refiere a la gran cara y frente presentada por

esta especie (ueya = grande; perorov = frente).

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE MEGAMETOPON

A Pleura toráxica y costado de los tergites abdominales negruz-

co con micropubescencia gris; funda del pene como en la

LA o o E A OS: M. occidentale (Philippi)

Le Pleura toráxica y costados de los tergites abdominales café con

abundantes áreas de micropubescencia dorada; funda del pene

como enla PESO WA A M. immaisericorde n. sp.

— 313 —

Megametopon inmisericorde n. sp.

(Figs. 301 - 304, 429

TYPO. ¿, N0 79, Perales, Santiago, Ene. 26; este especímen está depositado

en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a M. occidentalis, del cual puede ser separado por la

micropubescencia dorada en las pleuras toráxicas y en el abdómen; el carácter

definitivo para separarlo es la forma de la funda del pene.

DESCRIPCION DEL TYPO. (GS). Cabeza en vista frontal: cara con micropu-

bescencia dorada, excepto en el centro de la jiba facial; frente y vertex negro;

ocellarium con micropubescencia dorada, rala; pelos frontales negros; ocelos

amarillentos; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral: jiba facial dorada os-

cura; mystax negro, con pelos amarillos entremezclados en el borde oral; antenas

negras, primero y segundo segmentos con pelos negros, sexto basal del tercer seg-

mento rojizo; barba amariila; área postocular desuniformemente cubierta con mi-

cropubescencia dorada, pelos finos, amarillos; cerdas occipitales largas, en forma

de pelos, dobladas hacia adelante, el área donde están ubicadas las cerdas occi-

pitales luce desprovista de micropubescencia; cerdas postoculares en su mayoría

negras; proboscis negra brillante, con finos pelos amarillos, dispersos, en los 3/4

basales; palpos max'lares negros, pelos negros en la parte basal, pelos finos y

amarillos en el ápice. Protórax con micropubescencia dorada y pelos amarillos

dispersos; cerdas del collar negras, entremezcladas con unos pocos pelos negros.

Pleura toráxica desuniformemente cubierta con micropubescencia dorada y algu-

nos finos pelos amarillos; unos pocos pelos negros en la parte dorsal de la meso-

pleura; cerdas mesepimerales amarillas. Mesonotum con micropubescencia dorada,

excepto en las lineas centrales y en las manchas laterales, las cuales son café os-

curas. Micropubescencia gris dorada en los callos humerales, callos posteriores,

área posterocentral y scutellum; líneas centrales fusionadas formando una ancha

banda; vestidura del mesonotum de pelos negros, más largos y más densos en la

línea medio dorsal, especialmente en el área posterocentral; scutellum con finos

pelos negros dispersos; tres gruesas cerdas notopleurales negras; dos cerdas intra-

lares negras, una más débil; dos cerdas postalares negras, una más débil; cuatro

pares de finas cerdas scutelares negras. Costados del postmesonotum con micro-

pubescencia plateada. Alas hyalinas, ligeramente fumosas en el ápice; venas en su

mayoría café rojizas; membrana ondulada en las celdas marginales y submargina-

les. Coxas semejantes en cobertura a la pleura toráxica, pelos amarillos, menos

abundantes en las coxas posteriores; fémures, tibias y tarsos negros, vestidura de

pelos cortos, amarillos y comprimidos, unos pocos pelos más largos y erectos en

los fémures anteriores, con abundantes pelos negros entremezclados; cerdas negras.

Abdómen cubierto con micropubescencia gris dorada, dorado oscuro en el dorso

— 314 —

de los tergites; vestidura del abdómen de pelos cortos y negros en el dorso y

largos y amarillos en los costados de los tergites; sternites con pelos negros y

amarillos entremezclados, la mayoría de ellos negros hacia los últimos esternites;

sternite $ con un mechón de pelos negro dirigido ventralmente. Genitalia (Figs.

301, 302 y 303) negra brillante, pelos negros; funda del pene según se ilustra

en Fig. 304.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor café oscuro, pelos en su mayoría

negros.

El nombre ¿immisericorde se refiere a los hábitos predadores de esta especie.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 18.5 mm.; largo de alas 13.1 mm.; ancho

de alas 3.6 mm. Paratypos de tamaño similar.

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 39. SANTIAGO: 17 (gen. prep.) San-

tiago (INCO). 19 Lampa, Dic. 9, 1966, Zapata (INCO). VALPARAISO: 1¿G

N9Q 79 [typo] Perales, Santiago, Ene. 26 (INCO); 19 Valparaíso, Dic. 13, 1919, P.

Herbst (INCO). Sin localidad ni fecha: 19 E. P. Reed (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 422.

PRESA. Halictus sp. (Hym.).

DISCUSION. Esta especie puede separarse de los individuos más claros de M.

occidentale por la forma de la funda del pene (Fig. 311).

Megametopon occidentale (Philippi) n. comb.

Figs. 305-311, 430

Asilus occidental's Philippi, 1865, p. 696, Valdivia; Bromley, 1932, p. 281, Valdi-

via; Stuardo, 1946, p. 85; Hull, 1962 p. 545.

TYPO, perdido. En el presente trabajo se designa como neotypo a un macho

de Armerillo, Talca, Feb. 13, 1966, R. Charlin. este especímen está depositado en

el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro, costados del tórax y abdomen con micropubes-

cencia gris; patas y genitalia del macho negra brillante; sternite 8 en los machos

con un mechón de pelos negros dirigidos ventralmente, ovipositor negro brillante

o café oscuro, en forma de sable.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO. Cabeza en vista frontal: cara, frente y ver-

tex con micropubescencia gris oscura, amarillenta en los costados inferlores de la

cara; pelos frontales largos y negros; ocellarium negro rojizo; cerdas ocelares largas

y negras. Cabeza en vista lateral (Fig. 306): jiba facial gris oscura; mistax negro con

unos pocos pelos amarillos entremezclados cerca del borde oral, pelos dorsales del

— 315 —

mistax alcanzan a tocar los pelos de las antenas; antenas negras, primer y segundo

segmentos con pelos negros; barba amarilla; área postocular con micropubescencia

gris oscura y vestidura de finos pelos blancos; cerdas occipitales largas, dobladas

hacia adelante en un ángulo de 900 negras, mezcladas con largos pelos negros

doblados en igual forma; proboscis negra con finos pelos blancos dispersos en el

lado ventral, pelos cortos y amarillos en el ápice; palpos maxilares negros con

pelos negros. Protórax con micropubescencia gris y pelos blancos; cerdas del collar

negras. Pleura toráxica desuniformemente cubierta de micropubescencia gris y

finos pelos blanquizcos dispersos; cerdas mesepimerales amarillas. Mesonotum con

micropubescencia gris, excepto en las líneas centrales y en las manchas laterales;

líneas centrales fusionadas en una sola banda ancha; vestidura de pelos negros dis-

persos, más largos en la línea medio dorsal; 10-12 largas cerdas dorso centrales

negras; 3 cerdas motopleurales negras; 2 cerdas intraalares negras; 1-2 cerdas

postalares; scutellum semejante en cobertura al mesonotum, vestidura de finos

pelos negros dispersos; 2 pares de cerdas scutelares negras. Costados del post-

mesonotum con micropubescencia gris. Alas (Fig. 305) hyalinas, ahumadas en el

ápice; membrana ondulada en las celdas marginal y submarginal; venas café

oscuras, rojizas en el área basal. Patas negras brillantes, con finos pelos ama-

rillos, los cuales son más largos en los fémures y en las coxas; cerdas gruesas,

negras. Uñas negras. Abdómen gris oscuro, más claro en los bordes posteriores

de los tergites, vestidura de cortos pelos negros en la parte dorsal y pelos ama-

rillos más largos en los costados de los tergites y sternites; sternite 8 con un

mechón de pelos negros dirigido ventralmente. Genitalia negra briilante, pelos

negros (Figs. 307 y 310); funda del pene como en la Fig. 311.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor negro brillante (Figs. 307 - 309).

MEDIDAS. Largo total 12.0 - 18.4 mm, promedio 13.4 mm [neotypo 12.1 mm];

largo de alas 9.2 - 11.3 mm, promedio 10.1 mm [neotypo 9.2 mm]; ancho de alas

2.3-3.0 mm, promedio 2.6 mm [neotypo 2.4 mm].

MATERIAL EXAMINADO. 13% y 469. ACONCAGUA: 19 Zapallar,

Aconcagua, Dic. 15, 1950, R. £ M. (CAS); 19 10 km. E. of Papudo [sic], Aconca-

gua, Nov. 28, 1950 (CAS). ARAUCO: 137 29 Contulmo, Dic. 1, 1905, Schonemann

S. (INCO); 1 Contulmo, Ene. 1, 1903, Schonemann S. (INCO); 13 Contulmo,

Feb. 4, 1904, Schonemann S. (BERL); 19 Contulmo, Dic. 12, 1903, Schonemann

S. (BERL); 1 Contulmo, Feb. 6, 1904, Schonemann S. (BERL); 1g 29 Con-

tulmo, Ene. 9, 1905, Schonemann S. (BERL); 23 Contulmo, Ene. 4, 1905, Scho-

nemann S. (BERL); 192 Contulmo, Feb. 13, 1903, Schonemann S. (BERL); 1G

12 Contulmo, Ene. 12, 1905, Schonemann S. (BERL); 192 Contulmo, Marzo 6,

1903, Schonemann S. (BERL); 137 Contulmo, Feb. 2, 1903, Schonemann S.

(BERL); 19 Contulmo, Ene. 5, 1903, Schonemann S. (BERL). CAUTIN 27

[1 neotypo], 1 (gen. prep.) 19 12 km. N. E. of Pucón, 380 m., Ene. 12, 1951,

— 316 —

R. £ M. (INCO); 19 gen.. prep.) 10 mi. N. E. of Pucón, Ene. 12, 1951, R. 2

MEMINCO);=2 9 10: mi. N. E. of Pucón, Ene. 12, 1951; 'R. -£ -M. (CAS); 2.9

20 km. E. of “Temuco, Cautín, Ene., 1951, H. Smith (CAS). CONCEPCION:

13 29 (1 gen. prep.) Concepción, 1903, P. Herbst (INCO); 19 Concepción,

Marzo 4, 1959, "Trampas (INCO); 19 Concepción, Oct. 15, 1955, Rebolledo

(CAS); 19 Lota, Ene., 1944 (BERL); 194 Lota-Coelemu, Abril 9, 1961, Ore-

llana (INCO); 192 Manquimávida, Mayo 2, 1960, A. R. (INCO). CURICO:

19 Estero La Jaula, Los Quenes, Curicó,Ene. 4-18, 1964, L. E. Peña (INCO»;

23 Los Niches, 11 km. E. of Curicó, Dic. 20-30, 1963, L. E. Peña (INCO).

LINARES: 23 49 Bader von Longaví, Parral, Aschonemann S. (IZ 42

CAS; 17 INCO). MALLECO: 19 Angol, Ene. 7, 1941, P. A. Berry (INCO); 19

Angol, Feb. 9, 1941, P: A. Berry (ENCO); 1 9: (gen. prep.) Angol, Ene.. 1, 1932,

D. S. Bullock (USNM); 19 Angol, Feb., 1952, Cerda (AMNH). ÑUBLE: 192

50 km. E. of San Carlos, Ñuble, Dic. 26, 1950 (CAS). O'HIGGINS: 12 Cord.

Rengo, Schonemann S. (BERL). SANTIAGO: 19 Malvilla, Santiago, Dic., 1947,

L. E. Peña (BRAS); 12 (gen. en cópula) Peñalolén, Ene. 25, 1953 (INCO).

TALCA: 19 22 mi. N. of Talca, Dic. 22, 1950, R. £ M. (CAS). VALDIVIA: 19

Valdivia, Dic. 29, 1961, Motard (INCO). VALPARAISO: 19 Salto, Ene. 17, 1937,

Dr. Reed (CAS); 14 Valparaíso, Dr. Reed (CAS). Localidad desconocida: 1%

(JTM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 430.

DISCUSION. La mayoría de los especímenes estudiados son semejantes al

neotypo. Algunos son ligeramente más claros, con la micropubescencia de la

cara, mesopleura y abdomen amarillentos; los pelos y venas son también más

claros; estos especimenes son difíciles de separar de ¿immisericorde. El carácter de-

finitivo para su separación es la forma de la funda del pene (Fig. 311). Los espe-

címenes de las localidades sureñas son corrientemente más oscuros. Un macho

tiene los pelos del sternite 8 amarillos; esta característica está también presente

en la genitalia del macho unida a una hembra (192 gen. in copula) y que se

ilustra en la Fig. 307.

MENEXENUS n. gen.

TYPO DEL GENERO: Asilus concepcionensis Bromley, 1932.

Cabeza en vista frontal un - quinto más ancha que alta; vertex profundamen-

te hundido; ocellarium de tamaño moderado, ocelos grandes. Cabeza en vista la-

teral: área postocular un - octavo del ancho del ojo; jiba facial reducida a una

elevación más o menos redondeada en el margen oral, que ocupa el tercio infe-

— 317 —

rior de la cara; primer segmento antenal una y media vez el largo del segundo;

tercer segmento moderadamente comprimido, atenuado, una - vez y cuarto el largo

del primero, con un corto microsegmento, el cual algunas veces es muy pequeño

y difícil de observar, con un stylo terminal la mitad o tres - cuartos del largo del

segmento, con una corta espina apical; mystax ralo, largo, restringido al centro

de la giba fac'al, continuado en forma de una fila de cerdas a cada lado del borde

oral, mezclados hay algunos pelos cortos. Mesonotum con líneas centrales y

manchas laterales bien definidas; vestidura de pelos cortos, ralos y reclinado;

cuatro - s ete cerdas dorsocentrales entremezcladas con pelos cerdosos. Scutellum

con pelos de tamaño mediano, escasos; un par de largas cerdas escutelares bien

definidas. Costados dei postmesonotum con un grupo de pelos blancos de tama-

ño mediano. Celdas marginal y cuarta poster'or cerradas, pediceladas; bifurca-

ción de R a

ce corrientemente simétrica; R, algunas veces ligeramente angulada

en la base, termina a poca distancia antes del ápice del ala; R, termina detrás

del ápice de: ala; celda anal cerrada cerca del borde del ala, corrientemente con

un diminuto pedicelo; M, y m forman un ánguio de 909; espina de las tiblas

frontales ausente. Abdomen más o menos cilíndrico. Alas de las hembras alcanzan

el áp'ce del abdomen, en los machos son más cortas. Genitalia de los machos

no rotada, de moderada a grande, desde una vista dorsal luce más o menos re-

dondeada (Fig. 340 y 341); en vista lateral algo deprimida (Fig. 399 y 342);

epandrium en forma de forceps con una profunda hendidura en el borde distal,

en vista dorsal, la hendidura se ve rodeada por una área deprimida; hypandrium

corto; gonopodos largos, mitad apical atenuada, completamente visible desde

una vista ventral. Gen'talia de la hembra corta; séptimo segmento no modificado;

tergite 3 atenuado; tergite 9 corto y angosto; sín espinas en el ovopositor.

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 2 especies.

Este género es próximo a Heligmoneura Bigot, de la cual puede ser separado

por la estructura de la genita.:ia de los machos y por el ovipositor según se mues-

tra en las Figs. 339 - 342, y en Hull, 1962 : 582, Heligmoneura es paleártico, etiópi-

co, or:ental y australlano en distribución.

El nombre del género es el nombre de un discípulo ateniense de Sócrates.

CLAVE PARA LOS MACHOS DE, ,MENEXENUS

1. Epandria en vista dorsal lucen como una clava truncada poste-

riormente, más anchos que el tergite abdominal precedente

(F'g. 340); epandria doblados hacia la línea media en su parte

distal, en forma de un ángulo recto; funda del pene según

E ao M.. concepcionensis (Bromley) n. comb.

y”, Epandria en vista dorsal lucen como una clava alargada, del

mismo ancho o muy ligeramente más ancho que el tergite

abdominal precedente; epandria suavemente doblados hacia la

línea central en su parte terminal (Fig. 341); funda del pene

COn ena BIELSA MEE ar cti dao M. veredus n. sp.

Nota: Las hembras son muy difíciles de separar; sólo el color más gris de

la mesopleura y del abdomen, y los fémures más oscuros de veredus pueden ser

de alguna ayuda.

Menexenus concepcionensis (Bromley) n. comb.

(Figs. 334 - 340, 408)

Asilus concepcionensis Bromley, 1932, p. 281, Concepción; Hull, 1962, p. 545.

Heligmoneura concepcionensis (Bromley). Stuardo, 1946, p. 85.

TYPO. ¿Z, de Concepción, en el British Museum, London, Inglaterra, no

visto.

DIAGNOSIS. Cuerpo café; abdomen cubierto de micropubescencia gris; patas

café; mistax amarillo y negro, en su mayor parte amarillo en la mitad inferior;

epandria doblados hacia la línea media.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara, frente y vertex cubierto de micropu-

bescencia dorada, más densa en la cara; 6-8 cerdas frontales negras; ocellarium

con micropubescencia dorada, rala, ocelos amarillo rojizos; cerdas ocelares negras,

de tamaño mediano, proclinada. Cabeza en vista lateral (Fig. 355): cara dorada;

mystax totalmente amarillo o con 7 - 10 pelos negros en la parte superior; antenas

café oscuras; primer segmento en su mayor parte negro; primero y segundo

segmentos con micropubescencia plateada, dispersa, y pelos café oscuros concen-

trados en las partes dorsal y ventral; barba de pelos largos, finos y amarillos, más

bien dispersos; área postocular desuniformemente cubierta con micropubescencia

gris y plateada, vestidura de finos pelos amarillos, concentrados cerca de los bor-

des de los ojos; 6-10 cerdas postoculares más bien amarillentas; 5-6 cerdas occi-

pitales, la mayoría de ellas amarillas, algunas negras, todas dobladas hacia ade-

lante en ángulo recto; proboscis negra brillante, ligeramente deprimida hacia el

ápice, pelos largos, finos y blancos en la parte basoventral, pelos cortos, dorados

en el ápice; palpos maxilares negros, con largos pelos finos amarillos. Protórax

café rojizo, cubierto con micropubescencia dorada y plateada y con algunos pelos

finos y amarillos dispersos; cerdas del collar amariilas. Pleura toráxica seme-

jante en color y cobertura al protórax; pelos dispersos, finos y amarillos; 9-12

cerdas mesepimerales largas y amarillas. Mesonotum cubierto de micropubescencia

— 319 —

gris dorada, excepto en las dos líneas centrales y en las manchas laterales, las

cuales lucen claramente café oscuras; líneas centrales cuneiformes, su extremo

posterior alcanza hasta inmediatamente detrás de la sutura transversa; vestidura

de pelos cortos, negros y dispersos, excepto en las líneas centrales y las manchas

laterales; finos pelos blancos en los callos humerales, 1-3 gruesos pelos negros,

corrientemente presentes; scutellum con micropubscencia gris dorada y pelos

cortos, finos y negros dispersos; 4-7 cerdas dorsocentrales negras; 2 cerdas noto-

pleurales negras; 3 cerdas intraalares negras, 2 juntas, 1 separada; 2 cerdas post-

alares negros; un par de finas cerdas escutelares negras de tamaño mediano.

Costados del postmesonotum con micropubescencia plateada y finos pelos largos

amarillos. Alas (Fig. 344) hyalinas; venas café oscuras, R, café clara. Coxas se-

mejantes en cobertura a las pleuras toráxicas, pelos y cerdas amarillentas, más

abundantes en la parte anterior de las coxas frontales, en las coxas posteriores

más escasos; fémures, tibias y tarsos cafés, más oscuros en la parte dorsal de los

fémures, en el ápice de las tibias y en el ápice de los segmentos tarsales; fémures

cubiertos de pelos cortos, amarillentos, comprimidos, más bien ralos; tibias con

cortos pelos negros y amar llos entremezclados; pelos de los tarsos en su mayor parte

negros; unos pocos pelos largos, fimos y blancos en las caras ventral y latero-

ventral de los fémures y tibias, más abundantes en las tibias frontales, ralos o

escasos en las tibias posteriores; cerdas de las patas en su mayoría de tamaño me-

diano, negras, algunas largas cerdas amarillas en las tibias frontales y medianas y

en los tarsos. Uñas negras, café rojizas en el quinto basal. Abdomen cubierto de

densa micropubescencía gris clara, corrientemente café en las áreas dorsales o

láterodorsales de los tergites; vestidura de cortos y finos pelos negros dispersos,

los pelos son más largos en los costados de lo tergitess y en los esternites; cerdas

laterales de los tergites amaril:as, visiblemente más largas en el primer tergite.

Genitalia (Fig. 339, 340) café rojiza y negra, con largos pelos amarillos; epandria

recurvados apicalmente en d rección a la línea media o doblado en un ángulo

de 909 (Fig. 340); funda del pene según las Figs. 337 y 338.

HEMBRA. Semejante al macho; abdomen corrientemente gris oscuro, cerdas

en los costados de los tergites en su mayor parte negras; tergite 8 rojo oscuro en

parte; pe.os del ovipositor (Fig. 336) en su mayoría negros, algunos más largos;

pelos en los cercos amarillos.

MEDIDAS. Largo total 14.2-18.1 mm, promedio 16.1 mm; largo de alas

9.6 - 13.5 mm, promedio 12.0 mm; ancho de alas 2.6 - 3.1 mm, promedio 3.0 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 123 y 169. ACONCAGUA: 13 192 Zapallar,

Aconcagua, Dic. 15, 1950, R. £% M. (% INCO; 9 CAS). CONCEPCION: 12

Concepción, 1904, P. Herbst (CAS); 19 Concepción, Dic. 5, 1964, “T. Cekalovic

(CAS); 13 Florida, D'c. 20, 1963, Méndez (INCO); 1 (gen. miss.) San Pedro,

Ene. 15, 1957, J. R. (INCO); 17 San Rosendo, Concepción, Dic., 1926, R. £e E,

300

Shannon (INCO). COQUIMBO: 1gG 15 mi. S. of Los Vilos, Coquimbo, Dic. 12,

1950, R. £ M. (CAS); 192 20 mi.. S. of Ovalle, coast road, Dic. 13, 1950, R. 2e

M. (INCO). LINARES: 17 (gen. prep.), Las Cruces, Cord.. Parral, Dic. 12-14,

1960, Peña (INCO); 1% Longaví, Parral, Schonemann S. (BERL); 237 Parral,

Schonemann S. (BERL; INCO). MAULE: 1 19 Pelluhue, Maule, Dic. 2,

1953, L. E.. Peña (CAS). MALLECO: 1929 (gen. prep..) Angol, Nahuelbuta,

Dic. 22, 1962, Fetis (INCO). ÑUBLE: 19 Chillán, Dic. 7, 1961, Alister (CAS);

19 Cobquecura, Ñuble, Dic. 14, 1953, L. E.. Peña (OT'T); 1 2 San Carlos, Dic. 27,

1962, Alister (CAS); 13 50 km. E. of San Carlos, Ñuble, Dic. 26, 1950, R. 8: M.

(INCO). SANTIAGO: 12 Caleu, Santiago, Dic. 16, 1951, S.. Barros (CAS); 14

El Canelo, Santiago, M. Etcheverry, I. Pedagógico (CEE); 14 El Canelo, San-

tiago, Nov. 29, 1954, L. E. Peña (BRAS); 23 N9 43444, Manquehue, Dic., 1930,

F, Ruiz (USNM). VALPARAISO: 19 Quillota, Las Palmas, Nov. 20, 1954, L.

Peña (BRAS). Sin localidad ni fecha: 19 Chile, 1934, Dr. Reed (CAS). Argentina:

13 Bariloche, Río Negro, Argentina, Nov., 1926, R. £ E. Shannon (USNM)..

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig.. 408.

DISCUSION.. La proporción de pelos negros en el mystax varía desde dos -

tercios hasta la m'tad; estos pelos están siempre concentrados en la parte superior

del mystax. El cuerpo luce negruzco en individuos grasosos. El color de las áreas

oscuras de las patas varía desde el café oscuro hasta el negro.

Menexenus veredus n. sp.

(Figs. 341 - 344, 424)

TYPO. ¿£ de El Canelo, Dic. 21, 1952, E. Z. B.; este especimen está depo-

sitado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a M. concepcionensis, del cual se puede separar por

los epandria suavemente curvados; (Fig. 341) y la forma de la funda del pene

(Ese. ..344).

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara, frente y

vertex con micropubescencia plateada, más densa en la cara; seis pelos frontales

negros, de tamaño mediano; ocellarium con pubescencia semejante a la de la

fuente, ocelos negro rojzos; cerdas ocelares de tamaño mediano, fuertemente

proclinada. Cabeza en vista lateral. Cara plateada, mystax de pelos blancos, cinco

pelos gruesos y diez pelos finos, negros, ubicados dorsalmente y tres pelos negros

ubicados lateralmente; antenas negras con micropubescencia plateada rala, [pri-

mero] y segundo segmentos con pelos cortos y negros, la mayoría en la parte

dorsal y ventral; barba de finos pelos blancos dispersos; área postocular cubierta

desuniformemente con micropubescencia plateada, vestidura de finos pelos amari-

— 321 —

los, la mayoría de ellos concentrados cerca de los bordes de los ojos. Cerdas post-

oculares negras en la parte superior, amarillas en la parte inferior; cinco cerdas

occipitales negras en cada lado del vertex; proboscis negra, con finos pelos blancos

en la mitad posteroventral, con pelos cortos y amarillos en el ápice; palpos ma-

xilares negros y pelos blancos, unos pocos pelos negros de mayor longitud en el

ápice. Protórax rojizo y megro, cubierto con micropubescencia plateada y lar-

gos pelos blancos, ralos; cerdas del collar amarillas, una negra. Pleura toráxica

semejante en cobertura al protórax, solamente con unos pequeños pelos finos

blancos; 8 - 10 cerdas mesepimerales, la mayoría amarilla, 2 - 3 negras. Mesonotum

cubierto con micropubescencia gris, excepto en las líneas centrales y en las man-

chas laterales, las cuales lucen café oscuras bordeadas de una línea clara; vestidura

de pelos cortos y negros, ralos; scutellum con micropubescencia gris y algunos

pelos cortos, finos y negros; unos pocos pelos cortos y finos en los callos hu-

merales; 5 cerdas dorsocentrales negras; un par de cerdas escutelares negras, di-

rigidas dorsalmente. Costados del postmesonotum rojizo, con micropubescencia

plateada y finos pelos blancos. Alas hialinas, venas café oscuras. Coxas semejantes

en cobertura a las pleuras toráxicas, con pelos y cerdas blancas, las cuales son

más abundantes en la parte anterior de las coxas frontales y más escasas en las

coxas posteriores; fémures, tibias y tarsos café, más oscuros en la parte dorsal de

los fémures, en el ápice de las tibias y en el ápice de cada segmento tarsal;

vestidura de pelos cortos, amarillos, deprimidos; unos pocos pelos largos en los

fémures frontales y medianos, igualmente en las tibias, más abundantes en los

fémures y tibias anteriores; cerdas de las patas posteriores negras; cerdas de las

patas medianas y frontales, amarillas, con unas pocas cerdas negras entremezcladas;

cerdas largas y amarillas, presentes en las tibias frontales y medianas; cerdas

tarsales negras. Uñas negras, quinto basal rojizo, abdomen rojizo, cubierto de

micropubescencia gris; tergites de apariencia gris, esternites rojizos; vestidura del

dorso de los tergites compuesta por finos pelos cortos dispersos, negros, y pelos

más largos y amarillos en los costados de los tergites y en los esternites; cerdas

laterales de los tergites amarillas. Genitalia del macho (Figs. 341 y 342) rojiza y

negra, con pelos largos amarillos; epandria suavemente curvados (Fig. 341); funda

del pene como en las Figs. 343 y 344.

HEMBRA. Desconocida.

El nombre veredus se refiere al hábito cazador de la especie.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 13.9 mm; largo de ala 9.0 mm; ancho de

ala 2.6 mm. Paratypos de tamaño semejante.

MATERIAL EXAMINADO. 4. SANTIAGO: 33 [1 typo], (1 gen. prep.)

ElGanelo, Dic. 21 1959. E. Z. RE (INCO); 13 El Canelo, Ene, 28, 1956, L:

Peña (BRAS).

DISTRIBUCION GEOFRAFICA. Ilustrada en Fig. 424.

DISCUSION. El color de las patas varía desde café claro a café muy oscuro;

la cobertura de los tergites abdominales luce gris claro en uno de los paratypos

y gris oscuro en los restantes.

MYARTEX “ul

Myaptex Hull, 1962, pp. 508 - 509.

TYPO DEL GENERO: Myaptex hermann: Hull, por designación original.

Cabeza en v'sta frontal un - tercio más ancha que alta; vertex profundamente

hundido; ocellarium moderadamente grande, ocelos pequeños. Cabeza en vista

lateral: área postocular un - sépt'mo del ancho de los ojos; j¿ba facial prominente,

redondeada, ocupando dos - tercios de la cara; tercer segmento antenal compri-

mido, fuertemente atenuado hacia el ápice, tan largo o más largo que el pri-

mer segmento, con un corto m'crosegmento cilíndrico, stylo ligeramente dilatado

en el tercio apical aproximadamente uma y media vez el largo del tercer seg-

mento, con una corta espina en el ápice (Fig. 317); mystax de pelos y cerdas

entremezclados, las cerdas son más largas que los pelos. Mesonotum con líneas

centrales y manchas laterales bien def nidas y visibles; vestidura de pelos cerdo-

sos, cortos y largos, entremezclados, 12-14 cerdas dorsocentrales bien definidas,

ordenadas en una fila antes de la sutura transversa y en 2-3 filas detrás de la

sutura. Vestidura escutelar variable, unos pocos pelos largos o pelos y cerdas

entremezclados; cerdas escutelares variables, corrientemente uno o dos pares, o

varios sin formar ninguna fila. Costados del postmesonotum con micropubescen-

y R, se mantienen paralelas por una gran parte de su largo; R, termina antes

del ápice del ala y R;, detrás del ápice del ala; ceida anal cerrada por un corto

cia, sin pelos. Cerdas marginales y cuarta posterior cerradas ed celadas; R

) /

pedicelo; M, y m forman un ángulo de 909. Espina de la tibia frontal ausente;

4-9 cerdas gruesas en la parte láteroventral de os fémures posteriores. Abdomen

cilíndrico en los machos, atenuados en las hembras; primer tergite deprimido en

la línea med'a. Machos con las alas alcanzando el ápice del abdomen o ligeramente

más cortos, en las hembras las alas son siempre más cortas. Genitalia del macho

grande, conspicua, no rotada, corrientemente formando un ángulo de 409 a 900

con el abdomen, de forma variable; hypandrium corto; epandrium de tamaño

mediano a grande, globoso o ligeramente comprimido y alargado; gonopodos cor-

tos, globosos o alargados, desde una vista lateral aparecen más o menos atenuados;

funda del pene termina en dos largos procesos en forma de látigo (Figs. 315, 320,

326 y 330). Genitalia de la hembra larga, comprim'da, puntuda; sin espinas en

el ovopositor.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Neotropical (Chile), 4 especies.

— 323 —

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE MYAPTEX

l. Scutellum con uno a dos pares de cerdas escutelares ubicadas

en el borde posterior; disco del scutellum con pelos de ta-

maño mediano, finos, dispersos, munca forman mechones

CODIPACÍOS tae o REN e Ao SEAS o ae OS 2

JUN Scutellum con un mechón denso de pelos finos y blancos en

cada lado; el área central con 10-16 pelos cerdosos negros,

los cuales se asemejan a las cerdas scutelares ... M. vexillaria n. sp.

20: Epandria largos, angostos, no dilatados ni doblados hacia la

línea media (Fig. 329); esternite 8 en los machos con un

proceso tuberculiforme en la parte central distal, el cual posee

un denso mechón de pelos en el borde distal, más rectos en

la parte superior (Fig. 329); esternite 7 en las hembras según

setilustra enrlaa Pis a M. virilis n. sp.

pue Epa. .dria agrandado, globoso, curvado hacia la línea media

(Figs. 312 y 321); esternite 8 sin un proceso distal tuberculi-

forme (Figs. 313 y 318); esternite 7 en las hembras según se

ilustra en las Elgs: (SAY MI ie PSeIERO tai 3

(2): Epandria en vista dorsal recurvado en el ápice (Fig. 321), sin

un proceso distal en forma de espina; esternite 7 en las hem-

bras ¡extendido lateroposteriormente (His. IL

RAN CNEA LAME IRNOS M. brachyptera (Phil.) n. comb.

Ss. Epandria en vista dorsal doblado en ángulo recto hacia la línea

media, con un proceso distal en forma de espina (Fig. 312);

esternite 7 en las hembras sin extensiones en la parte látero-

Posterior a ea a o TON EE CIS AOS M. hermanni Hull

Myaptex brachyptera n. comb.

Figs. 317 - 322, 434)

Ásilus brachypterus Philippi, 1865, p. 698, Colchagua; Bromley, 1932, p. 28;

Stuardo, 1946, p. 84; Hull, 1962, p. 545.

Myaptex hermanni, Hull, 1962, Fig. 2445 (9).

TYPO, perdido. Un neotypo es designado en este trabajo como un macho

de Angol, Dic. 6, 1959, B. Carvallo; este especimen está depositado en el Depar-

tamento de Zoologia, Universidad de Concepción, Chile.

— 324 —

DIAGNOSIS. Cuerpo café oscuro, scutellum con finos pelos blancos dis-

persos y dos gruesas cerdas escutelares negras; genitalia del macho grande, epan-

dria recurvados en el ápice; esternite 7 en las Y expandido láteroposteriormente.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara cu-

bierta de densa micropubescencia plateada; frente negra con micropubescencia

plateada, rala antes del ocellarium y micropubescencia café detrás del oce-

llarium; pelos frontales ralos negros, formando una fila en el borde del ojo;

ocellarium semejante en cobertura a la frente, ocelos café oscuro; cerdas ocelares

negras, cabeza en vista lateral (Fig. 317): jiba facial plateada; mystax de finos pelos

blancos y gruesas cerdas negras entremezcladas; antenas negras, primero y segundo

segmentos con pelos cortos en su mayoría blancos en la parte ventral, negros en la

parte dorsal; micropubescencia plateada y finos pelos blancos dispersos, cerdas

postoculares amarillas y cortas; 9-11 cerdas occipitales, entremezcladas negras y

amarillas; proboscis negra, con largos y finos pelos blancos dispersos en la parte

pósteroventral, pelos cortos, finos y amarillos en el ápice; palpos maxilares ne-

gros con pelos blancos. Protórax cubierto de micropubescencia plateada y finos

pelos biancos dispersos; cerdas del collar amarilas; pleura toráxica con micropubes-

cencia plateada y amarillenta y unos pocos pelos finos y blancos, cerdas mesepime-

rales negras, entremezcladas con unos pocos pelos finos y blancos. Mesonotum,

callos y scutellum con cobertura semejante a la de las pleuras toráxicas, excepto

en las líneas centrales, las que lucen café oscuras, vestidura de pelos negros dis-

persos de diferente tamaño, más largos en el área dorsocentral; scuteilum con

finos pelos blancos dispersos; 7-9 cerdas dorsocentrales negras; dos cerdas noto-

pleurales negras; tres cerdas intraalares negras, una más gruesa; una cerda postalar

negra; un par de cerdas scutelares negras. Costados del postmesonotum con mi-

cropubescencia plateada; alas hyalinas, venas café. Coxas con micropubescencia

plateada, semejante a las pleuras torácicas, con unos pocos pelos y cerdas, los

pelos son más largos y más abundantes en la parte anterior de las coxas frontales;

fémures negros con pelos cortos y blancos, comprimidos, cerdas en su mayoría

amarillentas; tibias anterior y medianas y todos los tarsos café oscuros, con pelos

blancos y cerdas negras; tibias y tarsos posteriores semejantes en color y vestidura

a los fémures, con cerdas negras. Abdomen desuniformemente cubierto por mi-

cropubescencia plateada, dorso de los tergites en su mayor parte café; abdomen

en vista dorsal de apariencia bandeada; vestidura de cortos pelos negros dis-

persos en el dorso y pelos blancos en los costados y en la parte ventral; unas pocas

cerdas negras en los costados de los tergites 1 - 4, más abundantes en el borde pos-

terior del tergite 1. Genitalia (Figs. 318 y 321) café claro, cubierta de pelos cortos

amarillentos; epandria recurvados en el ápice; gonopodos cortos, aproximada-

mente un - tercio del largo de los epandria, hypandrium corto, funda del pene

según se ilustra en Fig. 320.

— 325 —

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor en forma de lámina, compren-

diendo también el segmento 8 (Fig. 322); esternite 7 extendido láteroposter or-

mente (Fig. 319).

MEDIDAS. Largo total 7.8 - 10.2 mm., promedio 8.4 mm. [neotypo 9.9 mm.);

largo de alas 5.1-5.9 mm., promedio 5.7 mm. [neotypo 5.5 mm.] ancho de alas

1.1 - 1.6 mm., promedio 1.4 mm. [neotypo 1.4 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 259%. ARAUCO: 19 Caramávida,

Arauco, Ene. 1-6, 1954, L. E. Peña (INCO); 39 Peillém - Pilli, Cord. Nahuelbuta,

600 - 800 m., Arauco, Ene. 13, 1954 (INCO); 17 Pichinahuel, Cord. Nahuelbuta,

1100 - 1400 m., Arauco, Ene. 31, 1954, L. E. Peña (OTI). CAUTIN: 1.0 Villas

rrica, Feb. 13, 1964, Cekalovic (INCO). CONCEPCION: 29 San Pedro, Ene. 12,

1951, J. R. (INCO). CURICO: 1 (gen. miss.) Cajon Teno, Feb. 22, 1956, J. He-

rrera (CEE). LINARES: 23 19 Cord. Parral, D:c. 1-8, 1960, Peña (INCO»;

13 19 Fdo. Malcho, Parral, Ene., 1957, L. E. Peña (INCO). MAULE: 1' (gen:

miss.) Cauquenes, Maule, Ene. 23, 1955, L. E. Peña (BRAS); 19 Pelluhue, Maule,

Dic. 2, 1953, L. E. Peña (INCO). MAELECO: TG" [neotypo| AnpolADIcAnOS

1959, B. Carvallo (INCO); 13 Angol, Dic. 5, 1956, C. Kruge (INCO); 192 Angol,

Dic. 2, 1955, J. Cid (INCO); 137 Angol, Nov. 10, 1961, H.M. Vegas (INCO); 19

Angol, Nov. 21 (USNM); 17 129 Angol, Nov. 19, 1955, C. Pérez (MICH); 19

Angol, Nov. 24, 1955, A. Raddatz (MICH); 19 Angol, Nov. 12, 1955, A. Raddatz

(MICH); 192 Angol, Nov. 24, 1955, J. Briceño B. (MICH); 19 Angol, Nov. 6,

1955, J. Briceño (MICH); 13 Angol, Nov. 29, 1955, F. Martineu (MICH); 19

Angol, Dic. 18, 1927 (INCO); 1 (gen. prep.) Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol,

1200 m., Ene. 2, 1951, R. £ M. (INCO); 19 Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol,

1200 m., Ene. 2, 1951, R. € M. (CAS). ÑUBLE: 17 Ñuble, 40: km. E. of Sant

Carlos, Dic. 23, 1950 (INCO); 3gZ 19 50 km. E. of San Carlos, Ñuble, Dic. 26,

1950, R. 8 M. (37 CAS; 19 INCO); 15 12 40 km. E. of San Carlos, Ñuble,

Dic. 24, 1950 (GAS); 1 Recinto, Ene.., 1955, L. E.. Peña (BRAS): SANTIAGO:

19 El Canelillo, Santiago, Etcheverry (CEE); 23 La Obra, Santiago, M. E..

Etcheverry, I. Pedagógico (CEE; INCO). TALCA: 17 Alto Vilches, Cord. Talca,

Nov. 21 - 23, 1964, L.. E. Peña (INCO). VALPARAISO 1'9 Reñaca, Ene. 15194

Dr. Reed (CAS). Sin localidad ni fecha: 19 Chile, E. C. Reed (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. llustrada en Fig. 434.

DISCUSION. La forma de los epandria en los machos y el sternite 7 en las

hembras caracterizan a esta especie. Se han encontrado variaciones desde el blanco

hasta el negro en el color de los pelos frontales; las tibias y tarsos poster ores

son corrientemente de color semejante que las de las patas frontales y medianas,

algunas veces, sin embargo, como en el caso del neotypo, estos son más oscuros;

el número de cerdas en los fémures es variable, pero corrientemente las cerdas

amarillas son más abundantes que las de otros colores.

396

Myaptex hermanni Hull

Figs. 312 - 316, 433)

Myaptex hermann:i Hull, 1962, p. 509, Concepción.

TYPO. ¿, Concepción, noviembre 19, 1908, P. Herbst, en Deutsches Ento-

mologisches Institut, Berlin (no visto).

DIAGNOSIS. Semejante a M. brachyptera, de la cual difiere por tener los

epandria doblados en un ángulo recto en el ápice y por poseer un proceso en

forma de espina en la parte posterior dorsal; las hembras tienen el esternite 7

sin expansiones láteroposteriores.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara, frente y vertex cubiertos de micro-

pubescencia plateada, menos densa entre el ocellarium y las antenas; ocellarium

plateado, ocelos blanquizcos; cerdas ocelares negras; pelos frontales blancos, dis-

persos. Cabeza en vista lateral: jiba facial plateada; mystax en su mayor parte

blanco, con cerdas negras entremezcladas en la parte dorsal; antenas negras, pri-

mero y segundo segmentos con pelos cortos y blancos en la parte ventral, negros

en la parte dorsal; barba blanca; área postocular desuniformemente cub'erta con

micropubescencia dorada, vestidura de fimos pelos blancos; cerdas postoculares

blancas; cerdas occipitales negras; proboscis negra con largos pelos finos y

blancos en la parte pósteroventral y pelos cortos, finos y amarillos en el ápice.

Protórax con micropubescencia dorada y pelos blancos dispersos; cerdas del coilar

amarillas. Pleura toráxica con micropubescencia dorada y unos pocos pelos

blancos de tamaño mediano en cada esclerite; cerdas mesepimerales negras y

blancas entremezcladas. Mesonotum cubierto con micropubescencia dorada y

plateada, excepto en las líneas centrales y en parte de las manchas laterales; ves-

tidura entremezclada de pelos negros y ralos, cortos y de tamaño mediano; pelos

cortos y blancos presentes a lo largo de los bordes y en el área pósterocentral;

scutellum con micropubescencia dorada y pelos blancos dispersos a ambos lados

del disco; 10 largas cerdas dorsocentrales negras; 2 cerdas notopleurales negras,

2 cerdas intraalares negras; 2 cerdas postalares negras; un par de cerdas escutelares

blancas. Costados del postmesonotum con micropubescencia dorada. Alas hyalinas,

venas café oscuras. Coxas con cobertura semejante a la de las pleuras toráxicas

y unos pocos pelos y cerdas blancas, más largas y más abundantes en la parte

anterior de las coxas frontales; fémures negros con pelos blancos comprimidos;

cerdas de los fémures frontales y medianos en su mayoría blancas, en los fémures

posteriores en su mayoría negras; tibias y tarsos café, con pelos blancos comprimi-

dos, las cerdas en su mayoría negras. Uñas negras, base rojiza. Abdomen en su

mayor parte cubierto con micropubescencia dorada, excepto en el dorso de ¡os

tergites, los cuales lucen cafés, debido a la micropubescencia menos densa; vesti-

dura de pelos cortos y negros en el dorso de los tergites, costados de los tergites

y esternites con pelos blancos: sternites 2 y 3 con unos pocos pelos largos y negros;

307

cerdas de los costados de los tergites en su mayoría blancas; vestidura del primer

tergite más abundante. Genitalia (Fig. 313) café rojiza, con pelos cortos, blancos,

comprimidos; epandria en vista dorsal doblada en ángulo en el ápice con un

proceso en forma de gancho en el ápice y con una visible emarginación antes

de la curva en ángulo (Fig. 312); gonopodos e hypandrium cortos; funda del

pene según se ilustra en la Fig. 315.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor comprimido (Fig. 316); sternite 7

según se ilustra en Fig. 314.

MEDIDAS. Largo total 12.3 -14.0 mm., promedio 13.2 mm.; largo de alas

7.1-8.2 mm., promedio 7.6 mm.; ancho de alas 1.4-2.1 mm., promedio 1.8 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 11 Z y 149. BIO-BIO: 13 20 km. W. of An-

tuco, Bío Bío, Dic. 28, 1950, R. £ M. (CAS); 1% 19 Negrete, Bío-Bío, Dic. 31,

1950, R. £ M. (2 CAS; INCO). CONCEPCION: 19 Fiorida, Dic. 15, 1962,

T. C. K. (INCO). CURICO: 1 19 Río Vergara, 2300 m., Ene. 18, 1964, L. E.

Peña (INCO). LINARES: 19 Bader von Longaví, Parral, Ene. 6, 1899, Schone-

mannS.. (BERL). MAULE: 1gG Chovellen, Maule, Dic. 5, 1953, L. E. Peña

(OTT); 13 Pelluhue, Maule, Dic. 2, 1953, L. E. Peña (INCO). MALLECO: 1G

Angol, Ene. 5, 1930 (INCO); 13 Angol, Ene. 7, 1937 (USNM); 19 Angol, Ene. 1l,

1951, 1936, D. $. Bullock. (USNM); 1.9. Angol, Ene. 1, 1951, R, £ Mo (CAS)

12 Angol, Dic. 9, 1960, S. García (INCO). O'HIGGINS: 19 23 km. N. of

Rancagua, O'Higgins, Dic. 21, 1950 (CAS). SANTIAGO: 19 Maipo, Dic. 27,

1959; A. Silveira (INCO): TALCA: 1:90 Alto Vilches, Ene. 17, 1964 ME. ¿E-PREna

(INCO); 1gZ mi. N. of Talca, Dic. 23, 1950, R. £ M. (CAS). VALPARAISO:

19 La Calera, Quilpué, Dic., 1939, E. P. Reed (INCO). Sin localidad ni fecha: .

1 Chile Central, 1892 - 1908, P. Germain (NMHN); 1 N9 84, Chile (INCO);

lg 19 Chile (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 433.

DISCUSION. La vestidura del scutellum varía desde dos mechones bien

definidos ubicados a ambos costados del scutellum y que dejan entre ellos una

área más o menos libre de pilosidad (como en el typo) hasta una distribución

más o menos uniforme de pelos; un par de las cerdas escutelares son blancas en

el typo, pero en algunas otras especies hay uno o dos pares de cerdas escutelares

negras. La cobertura del mesonotum varía del dorado al plateado y las líneas

centrales pueden estar muy bien separadas por una línea plateada o también

presentarse fusionadas (como en el typo). Los especímenes engrasados lucen

oscuros, algunos casi negros.

El ovipositor de la hembra mostrado por Hull, 1962, Fig. 2445, presenta el

sternite 7 con proyecciones laterales, esta característica es propia de las hembras

de M. brachyptera (Philippi), y no de M. hermanni Hull.

— 328 —

Myaptex vexillaria n. sp.

(Figs. 323 - 328, 454).

TYPO. Z, de Vicuña, Coquimbo, Nov. 2, 1961, Peña; este especimen está

depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a M. brachyptera, del cual se diferencia por la

gran genitalia negra de los machos, la cual está dirigida dorsalmente y forma,

aproximadamente un ángulo de 909 con el abdomen; sternite 7 de las hembras,

largo y angosto.

DESCRIPCION DEL TYPO (£G). Cabeza en vista frontal: cara con densa

micropubescencia blanca, menos densa sobre la jiba facial; frente, ocellarium y

vertex, negruzcos, con micropubescencia gris dispersa; pelos frontales entremez-

clados negros y blancos; ocelos negros; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista

lateral: jiba gris; mystax de pelos blancos y largas cerdas negras entremezcladas;

antenas negras, primero y segundo segmentos con pelos negros en el dorso y

pelos blancos en la parte ventral; tercer segmento como en la Fig. 323; barba

blanca; área postocular con micropubescencia café, blanca a lo largo de los

bordes posteriores de los ojos, vestidura postocular de finos pelos blancos; cerdas

postoculares negras; cerdas occipitales negras. Protórax con micropubescencia de

reflejos cuprosos, vestidura de largos pelos finos y blancos; cerdas del collar

blancas, con unas pocas cerdas negras entremezcladas. Pleura toráxica desunifor-

memente cubierta con micropubescencia gris, unos pocos pelos blancos y negros

entremezclados sobre los esclerites; cerdas mesepimerales negras. Mesonotum cu-

b'erto de micropubescencia gris, excepto sobre las líneas centrales y las manchas

laterales, las cuales lucen negruzcas; desde una vista lateral, el mesonotum

tiene reflejos cuprosos; vestidura de pelos cortos a medianos, negros y dispersos,

más largos y más abundantes en el área posterocentral, unos pocos pelos blancos

en los bordes; scutellum café oscuro brillante con un denso mechón de pelos blan-

cos en cada lado y largas cerdas negras (o pelos cerdosos) esparcidos sobre el área

central; 14 - 15 cerdas dorsocentrales negras, partiendo desde cerca del borde ante-

rior; dos cerdas notopleurales negras; tres cerdas intraalares negras; tres a cuatro

cerdas postalares negras; 2 pares de cerdas escutelares negras, semejantes a los pelos

negros del área central. Costados del postmesonotum con micropubescencia pla-

teada y tendiente al café. Alas (Fig. 328) hyalinas, venas negruzcas. Coxas serac-

jantes en cobertura a las pleuras toráxicas, unos pocos pelos y cerdas blancas, una

cerda negra en la coxa posterior, pelos más largos y más abundantes en la parte

anterior de las coxas frontales; fémures negros, rojizos en el borde apical, vestidura

de pelos blancos, cortos, deprimidos, unos pocos pelos blancos o negros en la

parte dorsal y ventral de los fémures medianos y frontal; tibias y tarsos café,

semejante en vestidura a los fémures; cerdas de las patas negras, úñas negras.

Abdomen cubierto de micropubescencia plateada; un par de manchas amarillas

— 329 —

poco diferenciadas en el dorso de los tergites 2-5; vestidura de pelos cortos y

blancos, cada pelo parece rodeado en la base por un anillo negro desprovisto de

micropubescencia, el abdomen luce punteado, especialmente desde una vista la-

teral; cerdas de los tergites 2-3 negras; primero y segundo tergites con pelos

blancos en los costados, más abundantes en los primeros tergites. Genitalia (Fig.

325) negra, con pelos blancos deprimidos; funda del pene como en la Fig. 326.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor como en la Fig.. 327; sternite 7

angosto, como en la Fig. 324.

El nombre vexillaria se refiere a la posición dorsal (en forma de bandera)

de la genitalia del macho.

MEDIDAS. Largo total 12.5 - 19.5 mm., promedio 17..5 mm. [typo 14.0 mm.);

largo de alas 8..1- 11.2 mm., promedio 10.1 mm. [typo 10.1 mm.]; ancho de alas

1.8- 3.0 mm., promedio 2.6 mm. [typo 2.4 mm..].

MATERIAL EXAMINADO. 5 y 199%. ACONCAGUA: 29 E. entrada al

túnel Aconcagua, 90 km. S. lllapel, Nov. 28, 1950, R. £ M. (CAS). COQUIMBO:

19 Estero Canela, Puerto Oscuro, Coquimbo, Oct. 24, 1961, Peña (INCO); 12

El Pangue, Vicuña, Coquimbo, Nov. 3-4, 1961, Peña (USNM); 19 Fray Jorge,

Coquimbo, Nov. 4-5, 1957, L. E. Peña (INCO); 1g 229 Hda. Illapel, Coquim-

bo;.600.m:, Nov: 1.=9,.1954, E. E. Peña (29 BRAS; 17 INCO) LG Sem

miss.) Hda.. Illapel, 600 - 1000 m., Oct. 24-25, L. E. Peña (BRAS); 12 Paiguano,

pres Elqui, Nov., Dr. Gajardo (PARIS); 192 Quebrada Los Choros, 400 - 500 m.,

Coquimbo, Oct. 31, 1961, L. E. Peña (USNM); 1 15 mi. S.. of Los Vilos, Co-

quimbo, Dic.. 13, 1950, R. £ M. (INCO); 59 Vicuña - Pangue, 900 m., Nov. 2-3,

1961, Peña (INCO); 1 [typo] Vicuña, Coquimbo, Nov. 2, 1961, Peña (INCO)JS

13 Quilimari, Oct. 25, 1964, Herrera (INCO); 192 Termas Soco, Nov.. 27, 1964,

Montes (CEE). SANTIAGO: 29 El Canelillo, Santiago, Etcheverry (CEE; INCO).

VALPARAISO: 19 Valparaiso. Nov. 15, 1922, P. Herbst (INCO); 12 Valparaíso,

Dic. 2, 1919, P: Herbst (GAS); 1.9, Valparaiso, Nov.. 13, 1922, P. Herbst (GAS):

Sin localidad ni fecha: 13 Chile, E. P. Reed (INCO); 1 (gen.. miss..) Chile

(INCO).

El Pangue, Vicuña, Coquimbo, Nov. 3-4, 1961, Peña (USNM); 19 Fray Jorge,

Coquimbo, Nov. 4-5, 1957, L. E. Peña (INCO); 17 29 Háda. Illapel, Coquim-

bo,-600 m., Nov. 1-9, 1954, L. E. Peña (29 BRAS; 1 INCO) LG 1E6m

miss.). Hda. lllapel, 600 - 1000 m., Oct. 24-25, L. E. Peña (BRAS); 19 Paiguano,

pres Elqui, Nov., Dr. Gajardo (PARIS); 19 Quebrada Los Choros, 400 - 500 m.,

Coquimbo, Oct. 31, 1961, L. E. Peña (USNM); 1g 15 mi. S. of Los Vilos, Co-

quimbo, Dic. 13, 1950, R. £ M. (INCO); 59 Vicuña - Pangue, 900 m., Nov. 2-3,

1961, Peña (INCO); 1g [typo] Vicuña, Coquimbo, Nov. 2, 1961, Peña (INCO);

1gZ Quilimari, Oct. 25, 1964, Herrera (INCO); 19? Termas Soco, Nov. 27, 1964,

Montes (CEE). SANTIAGO: 29 El Canelillo, Santiago, Etcheverry (CEE; INCO).

— 330 —

VALPARAISO: 19 Valparaíso, Nov. 15, 1922, P. Herbst (INCO); 19 Valpa-

raíso, Dic. 2, 1919, P. Herbst (CAS); 192 Valparaíso, Nov. 13, 1922, P. Herbst

(CAS). Sin localidad ni fecha: 13 Chile, E. P. Reed (INCO); 1 (gen. miss.)

Chile (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Como se ilustra en Fig. 454.

DISCUSION. Los machos son fácilmente reconocibles por la posición de

la gen'talia, la cual se dirige hacia arriba y por los dos densos mechones de

pelos blancos en el scuteílum; las hembras pueden ser reconocidas por los me-

chones del scutellum y por la forma del sternite 7. Algunos especímenes de

M. hermann: tienen pelos blancos a ambos lados del scutellum, pero nunca

formando mechones densos como en M. vexillaria.

Myaptex virilis n. sp.

(Bes 20399) 229)

TYPO. ¿Z, Termas Socos, Nov. 27, 1964, Zapata; este especimen está de-

positado en el Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo con micropubescencia café; mystax blanco; genitalia

del macho rojiza, epandria angostos; sternite 8 en los machos con un bien

definido proceso pósteroventral con pelos blancos, densos en el borde distal;

sternite 7 de las hembras según la Fig. 333.

DESCRIPCION DEL TYPO. ¿. Cabeza en vista frontal: cara con micro-

pubescencia amarilla, menos densa en la jiba facial; frente y ocellarium negros,

con m'cropubescencia café dispersa; pelos frontales en su mayoría blancos; ocelos

blanquecinos; cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral: jiba facial gris;

mystax largo, blanco; antenas (Fig. 331) café, primero y segundo segmentos

con pelos cortos, negros en la parte dorsal y la mayoría de ellos blancos en

la parte ventral; barba blanca; área postocular cubierta de micropubescencia

café y finos pelos blancos dispersos; cerdas postoculares amarillas; cerdas occi-

pitales negras; pelos blancos y finos en el vertex; proboscis negra, con pelos

finos y blancos en los tres- cuartos pósteroventrales, pelos cortos y blancos en

el ápice; palpos maxilares negros, con pelos blancos y negros entremezclados.

Protórax con micropubescencia dorada oscura y finos pelos blancos dispersos;

cerdas del collar amarillas. Pleuras toráxicas con micropubescencia, densa, dorada

oscura y con finos pelos biancos dispersos; cerdas mesepimerales blanquecinas.

Mesonotum cubierto de micropubescencia dorada oscura, menos densa sobre las

líneas centrales y las manchas laterales; micropubescencia plateada separando y

rodeando las líneas centrales y las manchas laterales; vestidura de cortos pelos

— 331 —

negros dispersos, más largos en el área pósterocentral, en los bordes pelos blancos

dispersos; scutellum con micropubescencia dorada oscura y finos pelos blancos

dispersos, más o menos ordenados en dos mechones; 5 cerdas dorsocentrales ne-

eras, ubicadas después de la sutura transversa; dos cerdas notopleurales amarillas;

dos cerdas intraalares negras; dos cerdas postalares negras; dos pares de cerdas

scutelares, un par amarillo, el otro negro. Costados del postmesonotum con

micropubescencia plateada. Alas hyalinas, venas café oscuras, café claras en las

áreas costales y posteriores. Coxas semejantes en cobertura a las pleuras toráxicas,

pelos y cerdas blancos, pelos más abundantes en la parte anterior de las coxas

frontales; fémures negros en la parte dorsal, café en la parte ventral, cubiertos

de cortos pelos blancos deprimidos, algumos pelos son más largos en la parte

dorsal y ventral; tibias y tarsos café, tibias posteriores obscureciéndose hacia el

dorso, vestidura semejante a los fémures; cerdas en su mayoría negras. Abdómen

con micropubescencia gris, cafesosa en los tergites 2-5, costados de los tergites

y esternites con cortos pelos blancos; cerdas en los tergites 1-4, blancos; unos

pocos pelos largos en los costados del tergite 1; esternite 8 con un proceso

distal con filas de pelos densos en el borde distal. Genitalia (Fig. 329) rojiza.

Epandria largos, angostos; gonopodos puntudos; hypandria corto; funda del

pene como en la Fig. 330.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor oscuro (Fig. 332), sternite 7

según se ilustra en Fig. 333.

El nombre virilis hace referencia al gran tamaño de la genitalia de los machos.

MEDIDAS. Largo total 12.9 - 21.3 mm., promedio 2.5 mm. [typo 18.9 mm.);

largo de ala 8.3-11.8 mm., promedio 10.0 mm. [typo 11.7 mm.|; ancho de ala.

2.1-3.0 mm. promedio 2.5 mm. [typo 2.9 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 53 y 129. ACONCAGUA: 192 Concón, Acon-

cagua, [?], Dic. 16, 1950, R. £ M. (CAS); 13 Pedegua, Aconcagua, Nov. 28, 1950,

R. £ M. (INCO). ANTOFAGASTA: 13 Taltal, Ene., 1869, Herrera (INCO)»;

12 Atacama, Copiapó, Feb. 1969, Pino (INCO). ATACAMA: 19 Las Juntas,

Dic. 11, 1965, Zapata (CEE). COQUIMBO: 17 39 20 mi. E. of La Serena, Dic.

16, 1950, R. £c£ M. (CAS); 12 5 mi. W. of La Junta, Coquimbo, Dic. 7, 1950,

R. kx M. (CAS); 19 15 mi. W. of La Junta, Dic. 7, 1950, R. £ M. (INCO);

Ig 29 Los Chinches, Vicuña, Feb., 1940 (29 CAS; 17 INCO); 19 5 mi.

N. of Ovalle, Dic. 1, 1950, R. £ M. (INCO); 13 (gen. prep.) 17 12 mi. E. of

Rivadavia, Coquimbo, Dic. 4, 1950, R. £ M. (INCO); 13 [typo] 19 Termas

Soco, Nov. 27, 1964, Zapata (INCO). Sin localidad ni fecha: 13 (JTM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Como se muestra en la Fig. 449.

DISCUSION. Las cerdas escutelares varían entre 1-2 pares y su color del

amarillo al negro; cuando hay un solo par presente, este es generalmente negro;

— 332 —

las cerdas notopleurales varían de amarillo a negro, a menudo estas son amarillas

en un costado del individuo y negras en el otro. Un especimen de la colección

J. T. Medina tiene una etiqueta manuscrita de Philippi como sigue: “A. longis-

tylus Ph.”, este es un nomen nudum.

NESITOTES:'n. gen:

TYPO DEL GENERO: Nesiotes chiloensis mM. sp.

Cabeza en vista frontal un - tercio más ancho que alto; vertex muy hundido;

ocellarium moderado, ocelos pequeños. Cabeza en vista lateral: área postocular

un -sexto del ancho de los ojos; jíba facial prominente, redondeada, ocupando

dos - tercios de la cara; primer segmento antenal una y media vez el largo del

segundo, el cual es casi esférico; tercer segmento antenal comprimido, bordes dorsal

y ventral paralelos en los tres - cuartos basales, y tan largo como los dos primeros

segmentos combinados; un microsegmento corto y cilíndrico con un largo stylo

tan largo como el tercer segmento, que lleva una corta espina apical; mystax de

pelos setiformes. Mesonotum con líneas centrales y manchas laterales; vestidura

de pelos cortos, débiles y dispersos; 6-8 largas cerdas dorsocentrales, ordenadas

en una simple línea desde antes de la sutura transversa. Scutellum con finos

pelos dispersos, de tamaño mediano; 3-4 pares de cerdas scutelares dirigidas

dorsalmente. Costados del postmesonotum con micropubescencia, sin pelo. Cerdas

marginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas; R, y R, forman una bifur-

cación casi simétrica; R, termina antes del ápice del ala y R, detrás del ápice;

celda anal cerrada y con un corto pedicelo; M, y m forman un ángulo de 909,

Espina de las tibias anteriores, ausente. Abdomen en la mayoría de los machos,

cilíndrico, en las hembras, atenuado y fuertemente comprimido a partir del

segmento 7; primer tergite interrumpdo en el centro (Fig. 345). Alas extendidas

hasta más allá del abdómen, esto es más notable en los machos. Genitalia del

macho grande, destacada, no rotada, corrientemente formando un ángulo de 609

en el abdómen; hypandrium grande, rodeando la base de la genitalia, formando

un anillo casi completo, separado por una corta distancia en el dorso; epandria

largos, angostos, expandidos lateralmente; gonopodos dirigidos dorsalmente con

un largo dististylo dirigido posteriormente (Figs. 346, 347); funda del pene larga,

expuesta, cubierta sólo en su base por los gonopodos, termina en dos tubos para-

lelos sigmoídeos. Genitalia de la hembra, larga, fuertemente comprimida, puntuda;

sin espinas en el ovopositor.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Neotropical (Chile), 1 especie, Nesiotes

chiloensis n. sp.

— 333 —

Este género está próximamente relacionado con Myaptex Hull, del cual se

puede separar por la ausencia de gruesas cerdas en la parte láteroventral de los

fémures posteriores y por la forma de la funda del pene, la cual termina en un

moderado tubo dob:e, sigmoídeo, y no en dos largos tubos en forma de látigo,

como en Myaptex.

El nombre Nesiotes hace referencia al habitat del genotypo (vyowwrys =

isleño).

Nesiotes chiloensis mn. sp.

(Bless 340 OZ EZ)

TYPO. S, de Dalcahue, Isla de Chiloé, Feb;*1=8, 11962, Pena; esterespe;

cimen está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de Con-

cepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro; pleura toráxica en su mayor parte cubierta

por bien definida micropubescencia plateada brillante; mystax negro, barba blan-

ca; genitalia del macho grande, epandria expandida en la parte distal, gono-

podos dirigidos dorsalmente (Fig. 346); ovipositor fuertemente comprimido.

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en v'sta frontal: frente con densa

micropubescencia dorada, más dispersa en la jiba facial; frente oscura; ocellarium

oscuro, ocelos roj:zos, cerdas ocelares largas y negras; pelos frontales largos y

negros. C..beza en vista lateral (Fig. 348): jiba facial dorada; mystax largo, negro;

antenas negras, primero y segundo segmentos con pelos negros, más largos en-

ia parte ventral; barba blanca; área postocular con micropubescencia plateada,

vestidura de pelos negros, en su mayoría concentrados cerca del borde de los

ojos; cerdas postoculares no b'en definidas; 5-6 largas y fimas cerdas occ'pitales

proclinadas en cada lado del vertex; proboscis negra, con pelos largos, finos y

dispersos en la mitad pósteroventral, pelos finos y amari.los en el ápice; palpos

maxilares negros, con pezos blancos, dispersos, de tamaño mediano. Protórax

negro, con micropubescencia plateada y finos pelos blancos y negros entremez-

clados, dispersos, pelos en su mayoría blancos en el lóbulo protoráxico; cerdas del

collar negras. Pleura toráxica cubierta de micropubescencia plateada brillante muy

destacada, excepto en la mesopleura, donde luce ligeramente negruzca y parcial-

mente cubierta por micropubescencia café; vestidura de largos y fimos pelos

blancos dispersos, entremezciados con algunos pelos negros, pelos de la meso-

pieura en su mayoría negros, cerdas mesepimerales amarillas. Mesonotum y

scutellum con micropubescencia plateada y dorada, excepto en las líneas centrales

y en las manchas laterales, donde lucen negruzco; vestidura de finos pelos negros

dispersos, de diferentes tamaños, más largos en el área pósterocentral; scutellum

— 334 —

con pelos negros y finos, dispersos; dos largas cerdas notopleurales negras; dos

cerdas intraalares negras; dos cerdas postalares negras, una más larga; 9-10 cerdas

dorsocentrales negras; tres pares de largas cerdas scutelares negras. Costados del

postmesonotum con densa micropubescencia plateada. Alas (Fig. 349) hyalinas,

ahumadas en los bordes distal y posterior, venas negras. Coxas semejantes en

cobertura a las pleuras toráxicas, con fimos pelos blancos, sin cerdas; fémures,

tibias y tarsos negros, con finos pelos blancos y negros dispersos, más largos

en los fémures, cerdas mejor definidas en las tibias y en los tarsos. Uñas negras.

Abdomen café oscuro, micropubescencia plateada en los costados de los tergites

y en los esternites, vestidura de finos y largos pelos blancos dispersos, más cortos

en el dorso; cerdas de los costados del tergite 1 entremezcladas negras con blancas,

en los tergites 2-7 blancas, corrientemente formando una fila de 3-4 cerdas en

cada lado. Genitalia (Figs. 346, 347, 350), grande, negra, vestida en su mayor

parte de pelos cortos y negros, pelos largos en la base de los gonopodos y en

la parte ventral de los epandria; dististylo (Figs. 346, 347) con espinas en la

parte ventral.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Fig. 351, 352) café rojizo, pelos

cortos, finos y amarillos.

El nombre chiloensis hace referencia a la localidad del typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 10.8 mm.; largo de alas 7.8 mm.; ancho

de alas 2.2 mm. Paratypos de tamaño similar.

MATERIAL SEXAMINADO. 23 y:98. CAUTIN: 19" 10'mi Ni ESof

Pucón, Ene. 12, 1951, R. £ M. (CAS). CHILOE: 1g [typo] 39 Dalcahue, Isla

de Chiloé, Ene. 8, 1962, Peña (INCO); 19 Los Muermos forest, S. Chile, Ene. 20,

1951, E. £ M. (INCO). OSORNO: 13% Osorno, Pucatrihue Costa, 4, 21 Feb.,

1967, L. E. Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 423.

DISCUSION. La genitalia de los machos es diferente de la genitalia de otras

especies próximamente relacionada, sin embargo, no se han hecho estudios de

estructuras internas de esta especie; la forma de la funda del pene se puede dis-

tinguir claramente entre los epandria y los gonopodos en la Fig. 346.

— 335 —

NOMOMYIA n. gen.

TYPO DEL GENERO: Erax murinus Philippi 1865.

Cabeza en vista frontal un - cuarto más ancha que alta; vertex muy hundido,

ojos bastante juntos (próximos) sobre el ocellarium, dejando una separación que

es la mitad del ancho de la frente; ocellarium bajo y pequeño, ocelos grandes.

Cabeza en vista lateral: área postocular un - quinto del ancho de los ojos; jiba

facial baja, ocupando ligeramente más de la mitad de la cara; antenas largas,

segundo segmento tres-cuartos el largo del primero, tercer segmento antenal tan

largo como el primero, comprimido, l'geramente atenuado en la base, más

atenuado distalmente; un corto microsegmento y un fino stylo, el cual es tan

largo como el tercer segmento, con una corta espina terminal; mystax com-

puesto por unos pocos pelos largos que nacen del área frontal de la jiba facial,

dos gruesas cerdas en la parte frontal. Cerdas del collar ausentes, sólo pelos finos.

Mesonotum con las líneas centrales y las manchas laterales bien definidas; ves-

tidura me:onotal de pelos cortos y negros en la parte anterior a la sutura trans-

versa, dos cortas filas de pelos más largos detrás de la sutura transversa; pelos

más largos en el área anterocentral, dos a doce cerdas dorsocentrales. Scutellum

con pelos de tamaño mediano a largo, dir'gidos dorsalmente; tres pares de cerdas

scute ares. Costados del postmesonotum con micropubescencia, sin pelos. Celda

marginal cerrada y pedicelada, expandida en la parte central; cuarta celda pos-

terior cerrada y pedicelada; R, y R, corren prácticmente paralelas en la parte

central; R, angulada en la base, con una vena trunca, y terminando antes del

ápice del ala, R, termina después del ápice; celda anal cerrada con un corto

pedicelo; área costal de las alas de los machos expandida; membrana con ondu-

laciones; M, y m forman un ánulo de 90%; M, ligeramente doblada. Espinas

de las tibias anteriores ausente. Abdomen ligeramente atenuado. Alas no alcanzan

el extremo del abdómen. Genitalia de los machos de tamaño moderado, no ro-

tada, corrientemente alineada con el abdómen; hypandrium corto, borde pos-

terior ligeramente bilobado; epandrium de largo moderado, aplastado en la parte

externa y con una gran depresión triangular, borde posterior con una emar-

ginac ón redondeada; gonopodos cortos, en vista lateral se ven alargados. Geni-

talia de la hembra truncada, con un corto ovipositor después del tergite 9; sin

espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Neotropical (Chile), 2 especies.

Este género es semejante a Lochmorhynchus Engel a causa de la forma de

la antena, la forma del mystax y la expansión costal del ala de los machos, pero

difieren en varios otros caracteres, muchos de ellos dados en la diagnosis. R, y

R, son útiles para separarlos: en Nomomyia R, termina antes del ápice del ala

— 336 —

y R, detrás del ápice, mientras que en Lochmorhynchus ambas venas alcanzan

el borde del ala antes del ápice.

El nombre Nomomyta hace referencia al tipo del habitat del género typo

(vopos = pradera; pvia = Mosca).

CLAVE PARA LAS ESPECIES DE NOMOMYIA

dl. Cuerpo café claro; fémur bicolor, negro en el dorso y café en

la parte ventral; scutellum cubierto de micropubescencia do-

rada; genitalia del macho café roj'za (Fig. 358); ovipositor

conto! enla Tao O os N. murina (Phil.) n. comb.

des Cuerpo gris oscuro; fémures negros brillantes, excepto la parte

basal y algunas veces también la apical, que son café; scutellum

cubierto con micropubescencia plateada; genitalia del macho

negra (Fig. 353); ovipositor como en las Figs. 356 y 357 ........

o E E VA RR IA E N. tvetteae n. sp.

Nomomyia tvetteae N. Sp.

(Mies 3033915) 2:10)

TYPO. Z, El Pangue, S. Vicuña, Coquimbo, Ene. 12, 1966 L. E. Peña; este

especimen está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad de

Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a N. murina, de la cual se puede separar por el

color gris del cuerpo, los fémures negros, algunas veces con la base y el ápice

rojizo y por la forma del epandrium (Fig. 353) y de la funda del pene (Fig. 354).

DESCRIPCION DEL TYPO (ZG). Cabeza en vista frontal: cabeza, cara y

vertex cub“ertos con micropubescencia plateada, menos densa alrededor de los

ocelos; pelos frontales negros; ocelos amarillos; cerdas ocelares negras. Cabeza

en vista lateral (Fig. 355): jiba facial plateada; mystax de pelos blancos y negros

entremezclados, dos gruesas cerdas negras en la parte anterior, cerca del borde

oral; antenas negras, en parte café, primero y segundo segmentos cubiertos de

micropubescencia plateada y pelos negros; barba de finos pelos blancos; área

postocular cubierta de micropubescencia plateada y finos pelos blancos dispersos;

cerdas postoculares negras, formando una fila con las cuatro cerdas occipitales

negras, las cerdas occ:pitales son más gruesas; proboscis negra, con largos y finos

— 337 —

pelos blancos en la parte pósteroventral, pelos cortos y amarillos en el ápice;

palpos maxilares negros con pelos blancos, pelos negros en la parte distal. Pro-

tórax con micropubescencia plateada y dorada, y con algunos finos pelos blancos

dispersos. Pleura toráxica en su mayor parte cubierta con micropubescencia pla-

teada, hay una área dorada en la mesopleura; vestidura de finos pelos blancos

dispersos; cerdas mesepimerales negras y blancas entremezcladas. Mesonotum con

micropubescencia dorada, sobre los callos humerales y las manchas laterales, las

líneas centrales café oscuras, separadas por una línea de micropubescencia pla-

teada y dorada, callos posteriores y el espacio entre las líneas centrales y las

manchas laterales en su mayor parte cubierto por micropubescencia plateada, o

en su defecto, luce negro; vestidura de pelos negros, cortos, dispersos, más largos

en el área pósterocentral; scutellum plateado, con fimos pelos negros de tamaño

mediano, dispersos; 10-12 cerdas dorsocentrales negras, poco definidas, debido a

que existen pelos negros de tamaño y color semejante entremezclado con las

cerdas; dos gruesas cerdas notopleurales negras; una gruesa cerda intraalar negra;

dos gruesas cerdas postalares negras; tres pares de cerdas scutelares negras. Cos-

tados del postmesonotum con densa micropubecencia plateada. Alas hyalinas li-

geramente ahumadas en el área costal y en el ápice, venas negras, cafés en el

área costal; área costal del ala expandida. Coxas semejantes en cobertura a las

pleuras toráxicas, pelos finos, los blancos más abundantes en la parte anterior

de las coxas frontales, sin cerdas; fémures en su mayor parte negros, quinto basal

y trocánter rojizos, fémures frontales rojizos en el quinto apical, vestidura de

finos pelos blancos, comprimidos en la parte dorsal, más largos y erectos en la

parte ventral; tibias frontales y medianas café, ligeramente más oscuras en la

mitad basal y en el borde apical, tibias posteriores en su mayor parte negras;

tarsos café oscuros; vestidura de las tibias y tarsos semejante a la de los fémures,

pelos más largos y más abundantes en la parte ventral de las tibias anteriores;

cerdas negras, más largas en las tibias, ausentes en los fémures frontales. Uñas

negras, cuarto basal café rojizo. Abdomen con micropubescencia gris, líneas de

micropubescencia café en los costados y en la línea media de los tergites; vesti-

dura de pelos cortos y negros en el dorso, pelos blancos más largos en los costa-

dos de los tergites y en los sternites; cerdas laterales de los tergites negras. Geni-

talia (Fig. 353) negra, pelos negros, unos pocos pelos blancos más cortos entre-

mezclados; funda del pene como en la Fig. 354.

HEMBRA. Semejante al macho; fémures más delgados y las alas sin expan-

sión en el área costal; ovipositor (Figs. 356, 357) similar en cobertura al abdómen,

finos pelos amarillos en los cercos.

Esta especie es dedicada a mi esposa, Ivette.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 22.2 mm.; largo de alas 14.2 mm.;

ancho de alas 4.1 mm. Paratypos de tamaños semejantes.

— 338 —

MATERIAL EXAMINADO. 43 y 6%. COQUIMBO: 19 4 mi. S. of

Vicuña, Dic. 3, 1950, R. £ M. (CAS); 1g 29 10 mi. W. of Vicuña, Dic. 3, 1950

(1 12 INCO; 19 CAS). 17 Totoralillo, Oct. 24, 1967, R. González (INCO)y;

lg [typo] El Pangue, S. Vicuña, Ene. 12, 1966, E. Peña (INCO). SANTIAGO:

292 Lampa, Enero, 1965, Zapata (INCO, CEE). Sim localidad ni fecha: 13 (gen.

prep.) 19 Chile, E. P. Reed (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Mustrada en Fig. 475.

DISCUSION. Un carácter definitivo para separar esta especie de mur/na es

la forma de la funda del pene, mostrada en las Figs. 354 y 360. La cantidad de

coloración rojiza en los fémures varía desde sólo un-quinto en la base hasta

un - cuarto en la base y en el ápice, esta última combinación se presenta más a

menudo en los fémures anteriores; unos pocos especímenes tienen la mayor parte

del lado ventral de los fémures anteriores rojizo.

Nomomyia murina (Ph'lippi) n. comb.

(Figs. 358 - 362, 456)

Erax murinus Philippi, 1865, p. 694, Santiago; Stuardo, 1946, p. 84.

Nerax murinus (Philippi), Hull, 1962, p. 478.

TYPO. ¿£, sin localidad, en el Museo Nacional de Historia Natural, San-

tiago, Chile (visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo café rojizo con micropubescencia plateada; fémures

negros en el dorso y café rojizo en la parte ventral, más gruesos en los machos;

alas expandidas en el área costal en los machos; genitalia de los machos pequeña;

ovipositor más bien cónico.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara, frente y vertex con micropubescencia

plateada, menos densa en la jiba facial, en el centro de la frente y casi ausente

en el ocellarium; pelos frontales blancos y negros entremezclados, ocelos rojizos;

cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral: ¡ba facial plateada; mystax de

cerdas biancas y negras entremezcladas, corrientemente en número semejante, dos

gruesas cerdas negras en la parte anterior cerca del borde oral; antenas oscuras,

segundo segmento café; primero y segundo segmentos con micropubescencia pla-

teada y pelos en su mayoría negros, unos pocos pelos blancos entremezclados en

la parte ventral; barba de finos pelos blancos; área postocular densamente cu-

bierta por micropubescencia amar'lla, pelos dispersos, fimos y blanquecinos;

cerdas postoculares cortas, débi:es, amarillas; seis cerdas occipitales negras, orde-

nadas en una fila a cada lado del vertex. Las primeras cerdas más gruesas; pro-

boscis negra brillante con finos pelos blancos dispersos en la mitad pósteroventral,

— 339 —

pelos cortos y blancos en la parte apical y pelos blancos en la parte basal. Pro-

tórax negruzco con micropubescencia plateada y finos pelos blancos dispersos.

Pleura toráxica en su mayor parte café rojiza, una área negra en la mesopleura

y en la esternopleura desuniformemente cubierta con micropubescencia plateada

y unos pocos pelos largos, finos y blancos; cerdas mesepimerales negras y amarillas

entremezcladas. Mesonotum con micropubescencia dorada, algunas veces plateada

en el callo posterior, excepto en las líneas centrales y en los bordes interiores

de las manchs laterales, las cuales lucen café oscuro, líneas centrales más anchas

en la parte anterior; vestidura de cortos pelos negros dispersos, más largos en

el área pósterocentral, finos pelos blancos en los callos humerales; scutellum café,

con micropubescencia dorada dispersa y finos pelos negros de tamaño mediano,

dispersos; 2-4 cerdas dorsocentrales negras, poco definidas, ubicadas detrás de

la sutura transversa; dos cerdas notopleurales negras; una cerda intraalar negra;

tres pares de largas y finas cerdas escutelares negras. Costados del postmesonotum

con micropubescencia amarillenta. Alas (Fig. 361) hyalinas, ligeramente ahumadas

en las áreas costal y apical, venas café. Coxas semejantes en cobertura a las

pleuras toráxicas, con finos pelos blancos, los cuales son más abundantes en la

parte anterior de las coxas frontales, sin cerdas; fémures negros en la parte

dorsal y café rojizo o café claro en la parte ventral, vestidura de finos pelos

blancos y gruesas cerdas negras, excepto en los fémures anteriores, con unos

pocos pelos negros entremezclados; tibias y tarsos café, pelos largos y cortos,

blancos, unos pocos pelos negros entremezclados, especialmente en las tibias me-

diana y en los tarsos; cerdas gruesas y negras. Uñas negras. Abdómen café, cu-

bierto con micropubescencia, la cual es plateada o gris en los bordes laterales

y en los sternites, café en los costados y en la línea mediodorsal, formando

aparentemente una línea contínua, el resto de la micropubescencia es café dorado;

vestidura de pelos cortos y dispersos, entremezclados negros y blancos, los pelos

blancos son más largos en los costados de lo tergites y en los sternites; cerdas

laterales de los tergites negras. Genitalia (Fig. 358) café rojiza, con pelos negros;

gonopodos cortos; hypandrium corto; funda del pene como en la Fig. 360.

HEMBRA. Semejante al macho, pero los fémures no son dilatados y el área

costal del ala no se presenta expandida (Fig. 362); ovipositor (Fig. 359) corto,

semejante en cobertura al abdómen, pelos negros.

MEDIDAS. Largo total 14.5 - 24.5 mm., promedio 18.5 mm., [typo: abdómen

roto]; largo de alas 9.9-14.2 mm., promedio 11.5 mm., [typo 12.5 mm]; ancho

de alas 2.8-4.1 mm., promedio 3.4 mm. [typo 4.0 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 133 y 79. COQUIMBO: 13 Hda. lllapel,

Coquimbo, 600 m., Nov. 1-7, 1954, L. E. Peña (BRAS). O'HIGGINS: 192 La

Leonera, Cord. Rancagua, 800 - 1900 m., Dic. 26-30, 1954, L. E. Peña (INCO).

SANTIAGO: 1 12 Peñalolén, Dic. 14, 1952 (MNHN). VALPARAISO: 17%

— 340 —

El Salto, Valparaiso, Dic. 27, 1919, P. Herbst (INCO); Ig (gen. prep.) El Salto,

Valparaíso, Ene. 15, 1921, P. Herbst (INCO); 13 Limache, A. Faz (INCO); 13

Olmué, Feb. 17, 1920, P. Herbst (CAS); 17 N9 18 Perales, Feb. 23 (INCO); 1G

Valparaíso, A. Faz (INCO); 19 Valparaiso, J., 189% (INCO); 29 Valparaíso,

1900, P. Herbst (INCO); 13 Valparaíso, Dic. 12, 1920, P. Herbst (CAS); 1

Valparaíso, Dic. 31, 1919, P. Herbst (CAS); 137 Valparaíso, Ene. 22, 1920, P.

Herbst (CAS). Sin localidad ni fecha: 19 N% 21 Chile, Dr. Reed (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 456.

DISCUSION. El especimen typo está incompleto; las antenas y la mitad distal

del abdómen faltan, por lo tanto no se ha efectuado estudio de la genitalia del

macho en el material typo. La variación en tamaño es considerable, esto se

demuestra en las medidas indicadas.

PHILONERAX Bromley

Philonerax Bromley, 1932, p. 270; Hull, 1962, p. 493.

TYPO DEL GENERO: Asilus mucidus Walker, 1837, por designación original.

Cabeza en vista frontal, un - cuarto más ancha que alta; vertex muy hundido;

oceliarium grande, ocelos de tamaño medianos. Cabeza en vista lateral: área post-

ocular un - octavo del ancho del ojo; jiba facial prominente, ocupando la mitad

de la cara; antenas cortas, segundo segmento corto, tercer segmento más corto

que el primero, atenuado hacia el ápice, comprimido, con un largo y delgado

stylo de aproximadamente dos y media vez el largo del segmento y con una corta

espina en el ápice; mystax abundante, naciendo desde toda la jiba facial. Meso-

notum con dos líneas centrales y manchas laterales, cobertura del mesonotum

de pelos cortos y dispersos, unos pocos pelos más largos detrás de la sutura trans-

versa; 3 cerdas dorsocentrales. Scutellum con unas pocas cerdas largas y gruesas

en el área discal, un mechón de pelos largos dirigidos dorsalmente en cada cos-

tado en el borde del scutellum, sin cerdas scutelares definidas. Costados del post-

mesonotum con micropubescencia, sin pelos. Celdas marginal y cuarta posterior

cerradas y pediceladas; R, y R, alcanzan el borde del ala antes del ápice; celda

anal cerrada en el borde del ala con un corto pediceio; M, y m forman un ángulo

de 900; área costal expandida en los machos, espina de las tibias anteriores

ausente, una fila de 5-6 cerdas cortas en la parte anterior de las tibias frontales

(Fig. 365). Abdómen atenuado. Alas ligeramente más cortas que el abdómen.

Genitalia del macho de tamaño moderado, no rotada, octavo sternite con largos

lóbulos dirigidos lateralmente y con largos y gruesos pelos dirigidos hacia la

línea media, formando una estructura similar a una cuchara (Fig. 363); hypan-

— 341 —

drium corto, oculto bajo el sternite 8; epandrium angosto, comprimido en el

ápice, formando una estructura lobular (Figs. 363 y 367); gonopodos grandes.

Genitalia de la hembra en forma de cuenta (Fig. 369); abdómen fuertemente

comprimido en el segmento 8; sin espinas en el ovipositor.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Neotropical (Chile), 2 especies.

Lonchodogonus Hull (1962 : 496-498), Figs. 209, 751, 1435, 1444, 2256,

2281, 2373 y 2382) pudría ser sinónimo de Philonerax. No he visto la especie typo.

CLAVE. PARA LAS ESPECIES. DE, PHIEONERAX

1: Especie de color café; fémures bicolor, negro en la parte dorsal

y café en la parte ventral; genitalia del macho y funda del

pene según las Figs. 363 y 364; lóbulos laterales del sternite 8

atenuados antes de la expansión apical ........ Ph. mucidus (Walker)

11 Especie negruzca; fémures en su mayor parte negros, algunas

veces ligeramente rojzzo en la parte ventral; genitalía del ma-

cho y funda del pene según las Figs. 367 y 368; lóbulos late-

rales del sternite 8 no atenuados antes del ápice y no expan-

dido idiota Ph. chilochicoens:s M. Sp.

Philonerax mucidus (Walker)

(Elg-=363=305; El)

Asilus mucidus Walker, 1837, p. 340, Port St. Elena.

Philonerax mucidus (Walker). Bromley, 1935, p. 270-272, Figs. 23 y 24 abc,

Patagonia, Nahuel Huapi, Bariloche y Chubut, Argentina; Hull, 1962, p. 485,

EPs 2121089 11054215905 +1439, 2144857922 20%

TYPO. G, Port. St. Elena, Dec. Lieut. Graves; ubicación de este especimen

desconocido (no visto).

DIAGNOSIS. Cuerpo café, pelos en su mayoría blancos; mystax de pelos

amarillos y negros entremezclados, sternite 8 con lóbulos laterales y pelos blancos

en el borde posterior, formando una estructura en forma de cuchara, la cual se

dobla hacia la linea media; ovipositor en forma de cuenta; segmento octavo

angosto, comprimido, visiblemente constricto.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara, frente, ocellarium y vertex con mi-

cropubescencia plateada, menos densa entre el ocellarium y las antenas; pelos

frontales amarillos con pelos blancos y negros entremezclados. Cabeza en vista

= $49 =

lateral: jiba facial luce café, plateada cerca de los ojos; mystax en su mayoría

amarillo, largo, con pelos cerdosos negros en el frente y a lo largo del borde

oral, pelos de la parte superior de la jiba facial dirigidos dorsalmente; antenas

café oscuras, primero y segundo segmentos con pelos amarillos en la parte ventral

y pelos cortos y negros en la parte dorsal, tercer segmento más oscuro, con tres a

seis pelos cortos en el dorso; barba amarilla; área postocular con micropubes-

cencia plateada, más densa a lo largo de los bordes posteriores de los ojos, ves-

tidura de finos pelos amarillos, las cerdas en los bordes posteriores de los ojos

también amarillos; 5-7 cerdas occipitales negras, detrás de los ojos a cada lado

del vertex; proboscis negra brillante con largos pelos blancos en la parte baso-

ventral, pelos cortos y amarillos en el ápice; palpos maxilares cafés, con pelos

blancos; área posterior del ocellarium con unos pocos pelos blancos. Protórax

café rojizo oscuro con largos pelos amarillos dispersos, fimos; cerdas del collar

amarillas, con unos pocos pelos negros entremezclados. Pleura toráxica café,

desuniformemente cubierta con micropubescencia dorada, con largos y finos pelos

amarillos dispersos, uniformemente distribuidos sobre los sclerites, unos pocos

pelos blancos cortos en la parte dorsal de la mesopleura, cerdas mesepimerales

gruesas, largas y café, entremezclada con unas pocas cerdas negras. Mesonotum

negro cubierto de micropubescencia gris, excepto sobre las líneas centrales, las

cuales se presentan desnudas y ligeramente divergentes detrás de la sutura trans-

versa; manchas laterales poco definidas; vestidura mesotonal de pelos blancos

y negros, cortos, dispersos, los pelos blancos son más abundantes en la parte

anterior, en los callos humerales, en los costados y en el área pósterocentral;

scutellum con densos pelos blancos cerca de los bordes laterales, unos pocos

pelos blancos o negros en el centro; 2-3 cerdas dorsocentrales cortas y negras,

poco definidas; 2-3 cerdas notopleurales negras, una algunas veces rojiza; una

cerda intraalar negra o rojiza; 2 cerdas postalares negras. Costados del post-

mesonotum café, cubierto de densa micropubescencia plateada. Alas hyalinas, ve-

nas café claras. Coxas café con micropubescencia plateada dispersa y pelos blancos,

unas pocas cerdas blancas, pelos más abundantes en la parte anterior de las

coxas anteriores; fémures ligeramente café en el lado ventral, café oscuro o

negro en el lado dorsal, la vestidura es de pelos blancos o amarillos con unos

pocos pelos finos negros entremezclados, los cuales son más abundantes en los

fémures posteriores, la vestidura de los fémures posteriores en general más larga;

tibia y tarsos café claros, con pelos blancos comprimidos en el lado dorsal y más

largos y más erectos en el lado ventral; cerdas negras y amarillas aproximada-

mente en igual cantidad; una fila de 5-7 cerdas cortas y negras en el lado

anterior de las tibias frontales (Fig. 365). Abdómen café claro con pelos cortos

y blancos, más largos y abundantes en los tergites 1 - 3, una banda ancha, desnuda,

café oscura, a lo largo de la línea media de los tergites abdominales. Genitalia

del macho según Fig. 363, café, con pelos blancos; lóbulos laterales del sternite 8

atenuados antes de la expansión apical; funda del pene como en la Fig. 364.

— 343 —

HEMBRA. Semejante al macho, pero con la banda café en los tergites abdo-

minales poco definida; área costal de las alas no expandida; ovipositor negro,

sternite 8 negro brillante, pelos ventrales del tergite 9 amarillo.

MEDIDAS. Largo total 11.0-18.1 mm., promedio 16.8 mm., largo de alas

8.2 - 10.3 mm., promedio 9.6 mm.; ancho de alas 2.5- 3.3 mm., promedio 3.0 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 4gS y 19. Argentina: 13 (gen. prep.) Bari-

loche, Río Negro, Nov., 1926, R. £ E. Schannon (INCO); 19 Bariloche, Nov.

28, Dic. 1, 1926, F. £ M. Edwards (INCO); 2% L. Nahuel Huapi, Eastern End,

Nov. 17, 1926 (MNHN); 1 Charbut, Patagonia, Dic., 1919, H. E. Box (BRIT).

DISTRIBUSION GEOGRAFICA. Desde el Lago Nahuel Huapi hasta Puerto

Santa Elena (459 S - 660 W aprox.) como se muestra en Fig. 411.

DISCUSION. No hay registros de esta especie en Chile pero la especie

pueae extenaers dentro de Chile siguiendo el paso internacional Pérez Kosales,

donde la cordillera es bastante baja.

Lonchodogonus cribatus Hull podría ser sinónimo de Ph. mucidus, de acuerdo

a la descripción y dibujos dados por Hull (1962: 498, Figs. 209, 751, 1435, 1444,

2256, 2281, 2373 y2382). No he visto el especimen typo que está en el Zoologische

Staatssammlung, Munich, Alemania.

Philonerax chilechicoensis n. sp.

(Figs. 366 - 370, 500)

TYPO. ¿, Chile-Chico, Lag. Buenos Aires, Aysen, Dic. 24-31, 1960, Peña;

este especimen está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad

de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a Ph. mucidus, del cual puede separarse por el color

gris del cuerpo, el color negro de las tibias y fémures y el color blanco de la

mayoría de las cerdas de las patas; los lóbulos laterales del sternite 8 no son

atenuados antes del ápice, el cual no es claramente expandido en su extremo.

DESCRIPCION DEL TYPO (£). Cabeza en vista frontal: cara y frente con

densa micropubescencia plateada a lo largo de los bordes de los ojos, área central

con micropubescencia dispersa, que luce más bien café oscura en la parte frontal

de la jiba facial y negra en la frente; pelos frontales blancos, con unos pocos

pelos negros entremezclados; ocellarium negro, ocelos amarillos; cerdas ocelares

largas, finas, entremezcladas blancas y negras. Cabeza en vista lateral (Fig. 366):

jiba facial luce más bien oscura, densa micropubescencia plateada en los bordes

de los ojos; mystax en su mayor parte negro en el centro, blanco en la parte

— 344 —

superior y en los costados, pelos de la parte superior dirigidos casi dorsalmente,

6 pares de largas cerdas negras en el borde oral; antenas negras, primero y

segundo segmentos con cortos pelos negros, unos pocos pelos blancos en la parte

ventral del primer segmento; stylo café oscuro; barba blanca; área postocular

en su mayor parte negra, con densa micropubescencia bianca a lo largo del

borde posterior de los ojos, vestidura de finos pelos largos dispersos y una fila

de 5-6 cerdas postoculares blancas; 6 - 8 cerdas occipitales en cada lado del vertex,

detrás del borde los ojos; proboscis negra brillante, con largos pelos blancos en

tres - cuartos basoventrales y pelos cortos, fimos y blancos en el ápice; palpos

maxilares negros con pelos blancos. Pleura toráxica negra, cubierta de micropu-

bescencia dorada oscura, dispersa, que deja espacios sin cubrir, algunos finos

pelos blancos, especialmente en la parte posterior de la mesopleura y de la

sternop leura; cerdas mesepimrales finas, blancas y negras entremezcladas, unas

pocas cerdas lucen más bien amarillentas. Mesonotum negro, desuniformemente

cubierto de micropubescencia gris dorada, excepto en las líneas centrales y en

parte en las manchas laterales anteriores que lucen desnudas y brillantes, vesti-

dura mesotonal de pelos blancos y negros, cortos, y ralos, los pelos negros son

más abundantes en el área central, los pelos blancos se presentan más bien pro-

clinados, excepto en un mechón a cada lado de las líneas centrales cerca del

borde anterior; scutellum glabroso, con un mechón de densos pelos blancos a

cada lado, largos pelos negros en el centro, más algunos pelos blancos más finos;

un par de cerdas dorsocentrales poco definidas; dos cerdas notopleurales negras;

una cerda intraalar negra; dos cerdas postalares negras. Costados del postmeso-

notum negro con micropubescencia plateada dispersa. Alas (Fig. 370) hyalinas,

venas negras en la parte anterior y café oscura en la parte posterior. Coxas negras

con micropubescencia blanca dispersa y pelos blancos, con unas pocas cerdas

blancas en las coxas medianas y posteriores; pelos más abundantes en la parte

anterior de las coxas frontales; fémures negros con pelos blancos y negros entre-

mezclados, los pelos blancos más comprimidos en los fémures posteriores, los

pelos más largos en los fémures frontales y medianos; tibias negras en la parte

dorsal, café en la parte ventral, cubiertas con cortos pelos blancos comprimidos

en la parte dorsal y largos pelos blancos y negros entremezclados en la parte ven-

tral; tarsos semejantes en color a la cobertura de la tibia, cerdas de las patas

blancas, excepto la fila de seis cerdas negras en la parte anterior de las tibias

frontales y algunas cerdas en la parte ventral de los tarsos. Uñas negras, cuarto

basal rojizo oscuro. Abdómen cubierto de micropubescencia gris, excepto en la

línea medio dorsal de los tergites, donde luce café oscuro, vestidura de pelos

cortos y blancos, excepto en la línea medio dorsal, pelos más largos en los cos-

tados de los tergites 1-3. Genitalia como en la Fig. 367, negra, con pelos blancos;

pelos largos en las proyecciones laterales del sternite 8, de color amarillo; funda

del pene según la Fig. 368.

— 345 —

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor como en la Fig. 369, negro,

cercos grises, pelos blancos.

El nombre chilechicoensis se refiere a la localidad del typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 17.5 mm.; largo de alas 11.7 mm.;

ancho de alas 3.4 mm. Paratypos similares en tamaño.

MATERIAL EXAMINADO. 23 y 29. AYSEN: 1g [typo], 29 Chile-

Chico, Lag. Buenos Aires, Dic. 24-31, 1960, Peña (INCO); 1% (gen. prep.)

Puerto Ibáñez, Lago Buenos Aires, Ene. 12-15, 1961, L. Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 500.

DISCUSION. Las hembras de esta especie se pueden separar de Ph. mucidus

por el color general del cuerpo, el cual es más bien gris y por el color de las

cerdas de las patas, las cuales son predominantemente blancas en vez de negras.

RHADINOSOMA n. gen.

TYPO DEL GENERO: Rhadinosoma calderense n. Sp.

Cabeza en vista frontal un -cuarto más ancha que alta; vertex profunda-

mente hundido; ocellarium bajo, pero grande, ocelos grandes. Cabeza en vista

lateral: área postocular un - sexto del ancho del ojo; cara plana (Fig. 379); primer

segmento antenal dos veces el largo del segundo, tercer segmento igual al largo

de los dos primeros combinados, deprimido; microsegmento cilíndrico, un - quinto

del largo del segmento, con un largo, delgado, ligeramente dilatado stylo que

lleva una corta espina en el ápice; mystax formado por una fila de gruesas cerdas

ubicadas en el borde oral, y 5-8 pelos cortos en el área central de la cara. Meso-

notum con líneas centrales y manchas laterales a veces poco definido; vestidura

de pelos cortos, débiles y ralos; cuatro pares de largas y fuertes cerdas dorso-

centrales bien definidas, ubicadas detrás de la sutura transversa. Scutellum con

vestidura de pelos cortos y débiles; un par de gruesas cerdas scutelares dirigidas

dorsalmente. Costados del postmesonotum con micropubescencia, sin pelos. Celdas

marginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas; R, y R, forman una bi-

furcación simétrica; R, alcanza el borde del ala en el ápice del ala, R, detrás del

ala; celda anal cerrada con un corto pedicelo; M, y m forman un ángulo de 709.

Espina de las tibias frontales ausente. Abdómen largo, cilíndrico, más angosto

que el tórax, con 2-4 cerdas largas y gruesas en cada lado de los tergites 2-7.

Alas alcanzan el extremo del abdómen. Genitalia del macho pequeña, corta, no

rotada (Figs. 378, 381 y 382); hypandrium corto; epandrium corto, digitiforme,

no en forma de fórceps; gonopodos cortos y globosos. Genitalia de la hembra

larga, fuertemente comprimida; sin espinas en el ovipositor.

— 346 —

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Neotropical (Chile), 1 especie, Rhadino-

soma calderense n. sp.

Este género no está próximamente relacionado con algún otro género chi-

leno de Asilinae; es fácilmente reconocible por la cara plana y unas pocas cerdas

en el borde oral, además son características las ruesas cerdas de los costados

de los tergites.

El nombre Rhadinosoma hace referencia a lo delgado del cuerpo de estos

insectos (padivos = delgado; goya = Cuerpo).

Rhadinosoma calderense mM. sp.

(Figs. 378 - 384, 469)

IPPO, a 0 Km. 5. E. Caldera, Atacama, Oct. 17, 1957, "L.. E. Béna;

este especimen está depositado en el Departamento de Zoología, Universidad

de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Cuerpo uniformemente cubierto de micropubescencia plateada,

más oscura en el dorso de los tergites; patas negras o café oscuras, base de los

fémures y tibias café claro; pelos cortos y cerdas en su mayoría blancos; mystax

blanco, genitalia del macho pequeña, café oscura; ovipositor café oscuro brillante.

DESCRIPCION DEL TYPO. (G). Cabeza en vista frontal: cara, frente, ver-

tex y área postocular cubierta de densa micropubescencia plateada; pelos fron-

tales finos y blancos; ocelos rojizos; cerdas ocelares finas y blancas. Cabeza en

vista lateral (Fig. 379); cara plateada, mystax de 16 cerdas blancas en el margen

oral y 4 cerdas más cortas entre el borde oral y la base de la antena, unos pocos

pelos cortos blancos entremezclados con las cerdas; antenas negras, con micro-

pubescencia plateada, la cual es densa en los primeros segmentos y rala en los

segmentos segundo y tercero; primero y segundo segmentos con pelos cortos,

blancos y negros entremezclandos; barba de pelos cortos y blancos; vestidura post-

ocular de pelos finos y blancos dispersos, principalmente concentrados cerca

del borde de los ojos; cerdas occipitales blancas, formando una fila contínua

detrás del vertex; cerdas postoculares blancas, alineadas con las cerdas occipitales,

formando en conjunto una sola fila: proboscis negra brillante con unos pocos

pelos largos, finos y blancos en la parte basoventral y pelos cortos y amarillos

en el ápice; palpos maxilares con unos pocos pelos blancos. Protórax cubierto de

densa micropubescencia plateada, pelos dispersos, finos y blancos; cuatro gruesas

cerdas blancas en el collar. Pleura toráxica cubierta de densa micropubescencia

plateada y unos pocos pelos largos y finos blancos; seis cerdas mesepimerales

blancas. Mesonotum cubierto por densa micropubescencia plateada, la cual es más

oscura en la parte anterior y sobre las líneas centrales y las manchas laterales;

— 347 —

alrededor de las líneas centrales y de las manchas laterales hay micropubescencia

dorada oscura mezclada con micropubescencia plateada; vestidura dispersa con-

sistente en unos pocos pelos negros y cortos cerca de la línea mediodorsal y unos

pocos pelos finos y blancos en el área pósterocentral; scutellum con micropu-

bescencia plateada densa y algunos finos pelos blancos uniformemente distri-

buídos; cuatro cerdas dorsocentrales, la mayoría de ellas negras; dos largas y

gruesas cerdas notopleurales (negras en un lado y blancas en el otro); una larga

y gruesa cerda intraalar blanca; una gruesa cerda postalar blanca; cerdas scute-

lares blancas. Costados del postmesonotum con densa micropubescencia plateada.

Alas (Fig. 380) hyalinas, ligeramente ahumadas en el ápice; venas café. Coxas

y trocánteres semejantes en cobertura a la pleura toráxica, pelos y cerdas blancas,

más abundantes en la parte anterior de las coxas frontales; base de los fémures

y tibias café claro; tarsos café oscuros; fémures, tibias y tarsos cubiertos de finos

y cortos pelos blancos dispersos, comprimidos; cerdas blancas, algunas cerdas ne-

gras en los tarsos, especialmente en la parte ventral. Uñas negras. Abdómen con

micropubescencia plateada, café en el dorso de cada tergite; vestidura de finos

y cortos pelos blancos; cerdas laterales de los tergites blancas. Genitalia (Fig. 378,

381 y 382) café rojiza oscura, con pelos de color similar; pelos blancos en los

cercos; funda del pene según la Fig. 384.

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Fig. 383) café oscuro, pelos

blancos.

El nombre calderense hace referencia a la localidad del typo.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 9.5 mm.; largo de alas 6.8 mm.; ancho

de alas 1.8 mm. Paratypos similares en tamaño.

MATERIAL EXAMINADO. 33, y 1 (gen. miss.). ATACAMA: 17 [typo]

40 km. S. E. Caldera, Atacama, Oct. 17, 1957, L. E. Peña (INCO); 12 Salado,

6: kem., S.. W., ¿Est. Castilla, Atacama, Oct. 17, 1957, L. E. Bena (INCON2

(1 gen. prep.) y 1 (gen. miss.) O. Boquerón, 25 km. S. Totoral, Atacama, Oct.

IS 1957. E. Beña (INCO):

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 469.

DISCUSION. El color de las cerdas mesonotales varía del blanco al negro,

las cerdas blancas, sin embargo, son siempre mucho más abundantes. Individuos

engrasados lucen completamente negros, excepto las cerdas.

— 348 —

STIZOLESTES Hull

Stizolestes Hull, 1962, p. 560.

TYPO DEL GENERO: Astlus pamponeroides Edwards (enmendado, ver discu-

sión).

Cabeza en vista frontal un-octavo más ancha que alta; vertex moderada-

mente hundido, ocellarium moderado. Cabeza en vista lateral; área postocular

un - quinto del ancho del ojo; jiba facial grande, angosta, fuertemente producida;

mystax abundantes, largo, ubicado a lo largo de la línea media de la jiba facial;

antenas largas, delgadas, primer segmento dos veces el largo del segundo, tercer

segmento atenuado una-y-cuarto veces el largo de los dos primeros segmentos

combinados, con un corto microsegmento cilíndrico y un largo y delgado stylo,

corrientemente tres - cuartos del largo del tercer segmento; cerdas occipitales y

postoculares no bien definidas, en su lugar abundants pelos finos y largos, fuerte-

mente doblados hacia adelante los de detrás del vertez. Líneas y manchas la-

terales del mesonotum bien definidas; vestidura mesotonal larga, más densa en

la línea medionotal y detrás de la sutura transversa; scutellum con pelos finos,

1-6 pares de cerdas escutelares; costados del postmesonotum con pelos. Celdas

marginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas; R, alcanza el borde del ala

casi en el mismo ápice del ala, R, lo alcanza bastante detrás del ápice; celda anal

cerrada con un pedicelo corto; M, y m forman un ángulo de 1200. Espina de

las tibias frontales ausente. Abdómen largo, cilíndrico en los machos, ligera-

mente comprimido en las hembras. Alas corrientemente extendiéndose más allá

del extremo del abdómen. Genitalia del macho pequeña, no rotada; epandria

corrientemente separados, dejando un espacio entre ellos, pero a menudo

sus extremos se tocan; gonopodos cortos, menos de un -tercio del largo de los

epandria; hypandrium corto, oculto bajo el sternite 8. Ovipositor puntudo, com-

primido; sin espinas en los cercos.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Neotropical (Chile) 8 especies.

Hull (1962 : 560) designó a A. nigriventris como el typo de este género, pero

se desprende de su descripción (base de las alas de los machos blancas, tibias

frontales con un mechón de cerdas) y las Figs. (especialmente figs. 2177 y 2211)

que él basó su descripción en la especie pamponeroides (Edwards) en vez de

nigriventris Philippi.

Las especies de este género han sido previamente incluídas en el género

Asilus Linne (Philippi, 1965; Bromley, 1932; Hull, 1962; y otros). El género

Asilus se caracteriza por la ausencia de cerdas en ei abdómen. La distribución del

género Asilus es dudosa hasta el momento, pues gran cantidad de especies han

sino anotadas en este género al cual posteriormente se ha establecido que no

- — 349 —

pertenecen. La lista de especies del género Asilus dada por Hull en 1962 : 545 - 546,

evidentemente incluye una gran parte de las especies asignadas a este género

por antiguos autores, una revisón de este género posiblemente lo reduciría al

Viejo Mundo. En Chile el género no está representado; un número importante

de las especies chilenas or'gimalmente asignadas a este género pertenecen a

stizolestes.

Las especies de Stizolestes som similares entre sí, las diferencias que permiten

separar las espec'es son, muchas veces, muy sutiles y en la mayoría de los casos

los caracteres presentan variaciones de importancia. En general, las especies de

este género presentan un cuerpo delgado, oscuro y con pelos más bien finos.

En algunas especies existe dicromismo sexual, especialmente demostrado en la

co oración de las alas, en las que algunos machos presentan un color lechoso;

el color del mystax y la barba ocasionalmente son diferentes entre los machos

y las hembras de una misma especie. Igual cosa sucede con la cubierta p'losa

del primer par de patas, especialmente de las tibias frontales. La genitalia de los

machos permite separar claramente la mayoría de las especies, igualmente son

útiles para separar los machos la disposición de pelos y cerdas del primer par

de patas y la coloración del mystax. Ninguno de estos caracteres es constante

n' utiliz ble para separar las hembras. Las hembras identificadas durante este

trabajo lo han sido, en su mayoría, por pertenecer a series en las cuales existen

machos. Por estas razones y careciendo de mayor información con respecto a las

hembras, se presenta en este trabajo una clave sólo para separar machos.

CEAVE PARA EOS=MACHOS DE STIZOLESDES

1. Mystax negro en la parte superior y blanco o amarillo en la

parte inferior, a veces solamente unos pocos pelos blancos o

amauilllos en sel «borde basal, ¡elresto nestor 2

LE Mystax “totalmente MESTO aaa OO 4

2(1). Tercio basal del ala blanco lechoso. .............. S. modellus (Brom!ey)

2 Alas hyalinas en ¿Llaribase tt o AN 3

3(2:). Tibias anteriores con largos pelos blancos densos mmm...

A A A A o RA ia S. gayi (Macquart)

aye Tibias anteriores con unos pocos pelos largos amarillos o ama-

TOS Y MENOS tae S. nigriventris (Philippi)

4(1”). Base de las alas blanco lechoso, o por lo menos parte del lóbulo

anal o el alulae blanquecino, no totalmente traslúcido .......... 5

— 350 —

6(5”).

6”.

7(6').

8(4).

9(8”).

Base de las alas hyalinas; cuando la base de las alas o las alulae

están sobrepuestas, aún así parecen traslúcidas

Epandria 4-5 veces más largos que anchos (Fig. 385); con una

bien definida mancha dorada detrás de cada callo humeral

A a rra La E o o o S. aureomaculatus (Bromley)

Epandria no más de 2 y media vez más largo que ancho; en el

mesonotum áreas amarillo pálido O plateado mmm... 6

Tibias y pretarsos anteriores con un denso y corto mechón de

pelos blancos o amarillos en forma de escobilla, dirigidos

ánterolateralmente y formando un ángulo de 45% con la tibia

o O o ed ec RAS. S. pamponeroides (Edwards)

Tibias anteriores sin el mechón de pelos descritos anteriormente 7

Tibias anteriores con 3-4 cerdas largas y rojizas en la parte

exterior, por lo menos una de ellas es de casi la mitad del

largo de la tibia; segmento de los tarsos anteriores con bien

definidos pelos blancos, densos, comprimidos, en el dorso y

EOS ACOSO. ona article ina OREA sa S. eritrichus (Philippi)

Tibias anteriores sin tales cerdas largas, pero con densos y largos

pelos amarillos, erectos, dirigidos posteriormente; segmento de

los tarsos anteriores con pelos negros .......... S. modellus (Bromley)

Tibias anteriores con largos y densos pelos a lo largo de la parte

ventral; sin cerdas largas bien definidas en el centro de las

ass Ha S. mayi (Edwards)

Tibias anteriores con unos pocos pelos largos y finos, negros, o

amarillos y megros entremezclados, y 3-5 cerdas largas co-

CA A ia a ida E 9

Barba, pelos de las coxas anteriores y pelos y cerdas de las tibias

anteriores negras; tibias en su mayor parte NegraS .............

dd e de Tn ad. AUMDQrOrS MAS

Barba, pelos de las coxas anteriores y corrientemente también

pelos de las tibias anteriores amarillos o blancos; tibias en su

mayor parte rojizas con el ápice negro, algunas veces todas las

tasMen” sur mayor parte negras” di o ales

— 351 —

Stizolestes atribarbis n. sp.

(Fig. 389, 459)

TYPO. G, de Pichinahuel, Cord. Nahuelbuta, Arauco, Dic. 31, 1958, G.

Barría; este especimen está depositado en el Departamento de Zoología, Uni-

versidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Semejante a $. nigriventris, pero los pelos de la barba, coxas

anteriores y tibias anteriores, negros; alas hyalinas, ligeramente ahumadas en

el ápice.

DESCRIPCION DEL TYPO. ¿. Cabeza en vista frontal: cara, frente y

vertex negros, una pequeña área entre la antena y el mystax dorado oscuro;

pelos frontales y cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral; jiba facial negra

brill nte; mystax totalmente negro; peios de las antenas negros; barba negra;

área occipital con micropubesencia gris oscura, vestidura negra; pelos en el lado

ventral de la proboscis negro, palpos maxilares negros, con pelos negros. Pro-

tórax con finos peos negros, ligeramente más claros en los lóbulos protoráxicos;

cerdas del co:lar megras. Pleura toráxica con micropubescencia gris oscura y

unos pocos pelos tinos negros; cerdas mesepimerales negras. Mesonotum con

micropubescenc'a gris oscura detrás de los callos humerales y a lo largo de los

costados; vestidura negra, con unas pocas cerdas dorsocentrales finas y blancas;

dos cerdas notopleurales negras; 3-5 cerdas intraalares negras; 4-5 cerdas post-

alares negras; scutellum con micropubescencia gris oscura y finos pelos blancos;

un par de cerdas scutelares negras. Coxas con micropubescencia gris y pelos

negros, abundantes en los fémures anteriores; tibias negras, tibias anteriores li- *

geramente café oscuras, vestidura de finos pelos cortos, negros en las tibias ante-

riores con 3-4 largas cerdas negras y varios pelos negros largos y finos dirigidos

posterormente; tarsos negros. Costados del postmesonotum con pelos blanque-

cinos. Alas hyalinas, ligeramente fumosas en el ápice. Abdómen uniformemente

cubierto por micropubescencia gris oscura, pelos cortos y negros en el dorso de

los tergites y pelos bancos más largos en los costados y en los sternites, más

abundantes en los costados del primer terg'te y en los sternites 1 y 2; cerdas en

el dorso de los tergites negras, en los costados blanquecina. Genitalia (Fig. 389)

negra, con pe.os negros, unos pocos pelos cortos blancos en los costados de los

epandria y de los gonopodos, pelos negros más largos en el borde ventral de

los epandria, cerca del ápice.

HEMBRA. Desconocida.

El nombre atribarbis hace referencia al color negro de la barba.

MEDIDAS DEL TYPO. Largo total 13.9 mm.; largo del ala 9.6 mm.; ancho

de alas 2.4 mm. Paratypos similares en tamaño.

— 352 —

MATERIAL EXAMINADO. 5¿. ARAUCO: 13 [typo] Pichinahuel, Cord.

Nahuelbuta, Arauco, Dic. 31, 1958, G. Barría (INCO); 3Z Pichinahuel, Cord.

Nahuesbuta; 1100 1300.11. Arauco, Ene. .3L,..195%,.L. Peña (13: OIT;.2 4

INCO). MALLECO: 1¿Z Sierra de Nahuelbuta, W. of Angol, 1200 m., Ene. 2,

1951, R. £ M. (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 459.

DISCUSION. Esta especie puede ser reconocida fácilmente por la vestidura

negra de la cabeza, el tórax y las patas; dos paratypos tienen las tibias ante-

riores y medianas en parte café oscuras.

Stizolestes aureomaculatus (Bromley) n. comb.

(Figs. 385, 386, 461)

Asilus aureomaculatus Bromley, 1932, p. 274, Fig. 25, Casa Pangue, Ensenada,

Castro, Ancud; Stuardo, 1946, p. 84; Hull, 1962, p. 545.

TYPO. G. Casa Pangue, en el British Museum, Londres, Inglaterra (mo

visto); 23 paratypos vistos.

DIAGNOSIS. Cuerpo negro brillante; una bien definida mancha dorada

detrás de cada callo humeral; mystax negro. Alas de los machos blanquecinas

en el tercio o en el medio basal; epandria 4-5 veces más largo que ancho; tibias

anteriores con largos y abundantes pelos amarillos.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara cubierta de micropubescencia gris,

frente y vertex negruzcos; pelos frontales negros; cerdas ocelares negras. Cabeza

en vista lateral: jiba tacial negra o gris oscuro; mystax negro; pelos de las antenas

negros; vestidura occipital negra, barba blanquecina con unos pocos pelos negros

entremezclados; palpos maxilares con pelos negros. Protórax negro con pelos ne-

gros dispersos, blancos en el lóbulo protoráxico; cerdas del collar negras. Pleura

toráxica negra con unos pocos pelos largos y finos, negros; cerdas mesepimera/es

entremezcladas negras y amarillas. Mesonotum con micropubescencia dorada detrás

de los callos humerales y a lo largo de los costados, vestidura negra; scutellum

negro con finos peios negros; 8-12 largas cerdas dorsocentrales negras; 2-4

cerdas notopleurales negras; 1-2 cerdas intraalares negras; 2-5 cerdas postalares

negras; 2-6 pares de largas y finas cerdas escutelares negras. Costados del post-

mesonotum con abundante m'cropubescencia dorada y finos pelos blancos. Alas

lechosas en el tercio basal o en la mitad basal, ahumadas en el ápice y en los

bordes posteriores; venas café oscuras. Coxas negras con micropubescencia gris

clara y pelos blancos, abundantes en la parte anterior de las coxas frontales;

fémures café oscuros a negros, con largos y finos pelos negros, sin cerdas definidas;

— 353 —

tibias amarillas, ápice negro; tibias anteriores con abundantes pelos largos y

amarillos a lo largo de toda la tibia y dirigidos posteriormente, sin cerdas bien

definidas; tibias medianas y posteriores con fimas cerdas negras; tarsos negros.

Uñas negras. Abdómen negro brillante con pelos blancos erectos en los segmentos

1 - 4, los pelos más cortos y en su mayor parte blancos en los tergites restantes.

Genitalia negra (Fig. 385); epandrium 4-5 veces más largo que ancho; funda del

pene como en la Fig. 386.

HEMBRA. Semejante al macho, pero las alas son hyalinas en la base y sin

pelos largos y densos en las tibias anteriores; tibias con cerdas negras y finas,

pelos amarillos o blanquecinos, algunas veces entremezcladas con unos pocos

pelos negros; ovipositor corto, puntudo, comprimido con pelos negros; pelos

cortos y amarillos en los cercos. Puede ser separada de las hembras de $. pampo-

neroides por la ausencia de pelos cortos, densos y comprimidos de color dorado

en las quillas de la cara, entre las antenas y el mystax, en aureomaculatus, las

quillas de la cara están cubiertas sólo por micropubescencia gris plateada.

MEDIDAS. Largo total 13.0 -22.5 mm., promedio 19.8 mm. (paratypos 18.0 -

20.0 mm.) largo de alas 11.5-13.3 mm., promedio 12.1 mm.; ancho de alas 2.8 -

3.2 mm., promedio 3.1 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 6% y 223%. ARAUCO: 192 Contulmo,Oct.

17, 1904, Schonemann S. (INCO); 192 Contulmo, Sept. 8, 1903, Schonemann S.

(BERL); 19 Contulmo, Nov. 7, 1903, Schonemann S. (BERL); 14 Curani-

lahue, Nov. 1, 1955, Ametller (INCO). CAUTIN: 1% 19 Cherquenco, Ene. -

Feb., 1954, T. Ramirez (1? INCO; 1% BRAS). CHILOE: 1% Aucar, Chiloé,

Ene. 6-15, 1952, L. E. Peña (INCO); 192 Ancud, Dic. 18, 1926, R. £ H. Shannon -

(USNM); 19 Chaiten, Chiloé, Feb. 5-8, 1954, L. E. Peña (OTT). CONCEP-

CION: 19 Lag. San Pedro, Nov. 1, 1963, Cekalovic (INCO); 12 Laraquete,

Oct. 18, 1964, Méndez (INCO). LINARES: 19 Estero Leiva, Cord. Parral, Oct. -

Dic., 1953, Villalobos(INCO); 23 Las Cabras, Cord. Parral, 1400 - 1600 m., Ene.

19-20, 1959, L. E. Peña (INCO). LLANQUIHUE: 19 Casa Pangue, Dic. 4-10,

F. £ M. Edwards (BRIT); 17 Casa Pangue, Llanquihue, Dic., 1926, R. £ E.

Shannon (USNM); 23 (1 gen. prep.) Calletué, 1933, Dr. Reed (INCO); 62

(1 gen. prep.) Los Muermos forest, Ene. 20, 1951, R. £ M. (42 CAS; 29 INCO).

MALLECO: 192 Angol, Nov. 11, 1961, W. Klocker (INCO); 19 “Termas Río

Blanco, Curacautin, 1050-1300 m., Feb. 21-24, 1954, L. E. Peña (INCO).

OSORNO: 19 30 km. W. of Purranque, Osorno, Ene. 16, 1961, R. £ M. (CAS);

19 10 km. E. of Puyehue, Osorno, Ene. 24, 1951, R. £ M. (INCO). VALDIVIA:

192 Corral, Dic. 7, 1910, R. Paessler (USNM).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 461.

Stizolestes eritrichus (Philippi) n. comb.

(Figs. 387, 388, 468)

Ásilus eritrichus Philippi, 1865, p. 698; Williston 1891, p. 90; Kertesz 1909, p. 256;

Stuardo, 1946, p. 85; Hull, 1962, p. 545.

TYPO, perdido. Se designa neotypo a un macho de Fdo. Malcho, Cord.

Parral, Dic. 1956, Peña; este especimen está depositado en el Departamento de

Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

DIAGNOSIS. Tibias anteriores con 3-4 largas cerdas rojas; tarsos anteriores

cubiertos con abundantes pelos blancos comprimidos; alas blanquecinas en el

borde alar y en la alulae; mystax totalmente negro (conocidos sólo los machos).

DESCRIPCION DEL NEOTYPO. (¿G). Cabeza en vista frontal: frente,

cara y vertex negruzcos, micropubescencia gris dispersa en los costados de la

jba facial; pelos frontales y cerdas ocelares negras. Cabeza en vista lateral: jiba

facial gris oscura; miystax totalmente negro; pelos de las antenas negros; barba

amarillenta; área postocular negruzca con fimos pelos negros; palpos maxilares

negros con pelos negros. Protórax con pelos negros, pelos blancos en los lóbulos

protoráxicos; cerdas del collar negras. Pleura toráxica con unos pocos pelos finos

negros; cerdas mesepimerales negras y amarillas entremezcladas. Mesonotum con

micropubescencia plateada; 8-10 cerdas dorsocentrales poco definidas; dos cerdas

notopleurales negras; 1 cerda intraalar negra; 2 cerdas postalares negras; scutellum

con finos pelos negros y unos pocos pelos amarillos entremezclados, especialmente

en el borde posterior; dos pares de cerdas escutelares negras. Coxas anteriores con

abundantes pelos muy blancos; fémures negros; tibias rojizas con el ápice negro,

tibias posteriores con la mitad apical negra; tibias anteriores con tres largas

cerdas rojo brillantes en la parte posterior y dos cerdas más cortas en el ápice;

sin pelos largos en la tibia anter'or; tarsos anteriores completamente cubiertos en

su dorso y en los costados por pelos amarillos de tamaño mediano visiblemente

comprimidos; vestidura similar en los tarsos medianos pero menos definida.

Abdómen con pelos amarillos, claramente más largos en la parte ventral, últimos

dos tergites y últimos tres sternites con pelos negros. Genitalia (Figs. 387 y 388)

negra, con pelos negros, más largos en el borde basal de los epandria.

HEMBRA. Desconocida.

MEDIDAS DEL NEOTYPO. Largo total 17.8 mm.; largo de alas 14.2 mm.;

ancho de alas 3.4 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 23. LINARES: 27 (1 neotypo) Fdo. Malcho,

Cord. Parral, Dic., 1956, Peña (INCO).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 458,

—355—

DISCUSION. Esta especie (SF) puede ser reconocida por las rojas cerdas

de las tibias frontales y por la característica vestidura de los tarsos anteriores.

Stizolestes gayi (Macquart) n. comb.

(Bis as ld Sa0 1)

Asilus gayi Macquart, 1838, p. 148 (nec Dasypogon gayi Macquart 1838, p. 37),

Chile; 1850, p. 95; Blanchard, 1852, p. 370, Santiago, Valparaíso; 1854, Pl,

2 figs. 12 y 12a; Walker, 1855, p. 704; Philippi, 1965, p. 695, Santiago, Val-

paraíso, Valdivia; Williston, 1891, p. 89; Bromley, 1932, p. 273, Concepción,

Puerto Montt, Puerto Varas, Peulla, Ancud, Casa Pangue, Ensenada; Stuardo,

1946,. p. 8D.

Dysmachus gay: (Macquart). Kertesz, 1909, p. 277.

Asilus valdivianus Philippi, 1865, p. 696, Valdivia; Williston, 1891, p. 91; Kertesz

1909, p. 265; Stuardo, 1946, p. 85; Hull, 1962, p. 546.

Asilus incomptus Philippi, 1865, p. 696, Valdivia; Williston 1891, p. 90; Kertesz,

1909, p. 257; Bromley, 1932, p. 281; Stuardo, 1946, p. 85; Hull, 1962, p. 545.

TYPO. 9, Chile, en el Museo Nacional de Historia Natural, París, Francia

(no visto). Typos de A. valdivianus y Á. incomptus perdidos.

DIAGNOSIS. Cara en su mayor parte dorada; mystax negro en la parte

superior y de un blanco puro en la parte inferior en los machos, en las hembras

en su mayor parte negro; pleura toráxica y dorso de los tergites con micro-

pubescencia café; alas hyalinas; machos con abundantes pelos de blanco puro,

densos, en las tibias anteriores, las hembras con esta pilosidad menos compacta.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara con micropubescencia dorada entre

la jiba facial y las antenas y en los bordes inferiores de la cara, jiba facial café;

frente con micropubescencia gris; pelos frontales y cerdas ocelares negras; pelos

de las antenas negros. Cabeza en vista lateral: jiba facial de apariencia negruzca;

mystax negro en los dos- tercios superiores, blanco en el tercio basal; barba

blanca; área postocular gris con finos pelos largos; pelos de la parte ventral de la

proboscis blancos; palpos maxilares negros con pelos negros. Protórax con pelos

blanquecinos; cerdas del collar negras y amarillas entremezcladas. Pleura toráxica

café oscura brillante, desuniformemente cubierta de micropubescencia café dorada

y unos pocos pelos finos y blancos; cerdas mesepimerales amarillas. Mesonotum

con micropubescencia plateada excepto en las líneas centrales y en las manchas

laterales, en las cuales luce café oscuro o nerguzco; scutellum con micropubes-

cencia gris y pelos blancos y finos uniformemente distribuidos; 10-14 cerdas

dorsocentrales negras, corrientemente poco definidas; dos cerdas notopleurales

negras; una cerda intraalar negra; dos cerdas postalares negras; 3-4 pares de

= 356 =

largas y finas cerdas scutelares negras. Alas (Fig. 394). Coxas con pelos blancos,

abundantes en la parte anterior de las coxas frontales; fémures negros con pelos

cortos y blancos en los fémures mediano y posteriores; largos pelos blancos en la

parte ventral y largos pelos negros en el dorso de los fémures anteriores; tibias

frontales con largos y finos pelos blancos bien visibles, corrientemente ordenados

en dos densas filas a lo largo de la parte posterior; cerdas amarillas en las tibias

anteriores y en los fémures posteriores, el resto de las tibias en su mayoría negras;

tibias rojizas, mitad basal o ápice negro; tarsos negros. Abdómen con micropu-

bescencia gris en los costados y en la parte ventral; dorso café oscuro brillante con

pelos cortos amarillos; el resto de la vestidura de pelos blancos de tamaño me-

diano a largo, más denso en el primero y segundo tergites. Genitalia según

Fig. 391; vestidura negra, unas pocas cerdas negras, más largas, en la parte

ventral.

HEMBRA. Semejante al macho, pero el mystax es en su mayoría o total-

mente negro y sólo unos pocos pelos largos, blancos en las tibias anteriores;

ovipositor similar ai de otras especies del género.

MEDIDAS. Largo total 15.5-16.8 mm., promedio 17.5 mm. [typo 6 lin.

(=12.6 mm.)|; largo de alas 11.4- 11.5 mm., promedio 11.5 mm.; ancho de alas

2.8-3.1 mm., promedio 3.1 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 513 y 419. ARAUCO: 1% Contulmo, Dic.

20, 1904, Schonemann S. (INCO); 1% Contulmo, Oct. 29, 1903, Schonemann S.

(INCO); 13 Contulmo, Oct. 15, 1904, Schonemann S. (BERL); 1 29 Con-

tulmo, Dic. 2, 1904, Schonemann S. (BERL); 29 Contulmo, Dic. 22, 1904, Scho-

nemann S. (BERL); 12 Contulmo, Oct. 26, 1903, Schonemann S. (BERL); 19

Contulmo, Dic. 20, 1904, Schonemann S. (BERL); 12 Contulmo, Dic. 1, 1964,

Schonemann S. (BERL); 29 Contulmo, Nov. 22, 1904, Schonemann S. (BERL);

13 19 Contulmo, Nov. 8, 1903, Schonemana S. (BERL); 12 Contulmo, Dic. 1,

1903, Schonemann S. (BERL); 23 Contulmo, Nov. 15, 1904, Schonemann S.

(BERL); 192 Contu:mo, Nov. 12, 1905, Schonemann S. (BERL); 1% Contulmo,

Nov. 20, 1903, Schonemann (BERL); 19 Peillem Pilli, Cord. Nahuelbuta, 600 -

800 m., Arauco, Ene. 13, 1954, L. E. Peña (INCO). CAUTIN: 17 Cerro Ñielol,

Temuco, Ene. 2, 1963, Fetis (INCO); 19 Loncoche, Ene. 5, 1962, H. M.

Vegas (INCO); 17 Temuco, Chile, 1920 (USNM); 1% Temuco, 1920 (USNM);

1g Temuco, Oct. 13-15, 1940, P. A. Berry (USNM); 19 20 km. E. of Temuco,

Ene. 7, 1961, R. £ M. (CAS); 1g Temuco, Nov. 3, 1960, Balboa (INCO); 12

Toltén, Feb. 10, 1937 (USNM). CONCEPCION: 1¿G Concepción, Nov. 18, 1956,

F. Silva (INCO); 13 Concepción, Oct. 18, 1959, F. Silva (INCO); 13 Concep-

ción, Nov. 12, 1956, F. Silva (INCO); 19 Concepción, Nov. 20, 1956, F. Silva

(INCO); 19 Concepción, Oct. 3, 1956, Valdés (INCO); 192 NY 1146 Concep-

ción, Nov..20, 1956, F. Silva (INCO); 13 Concepción, Nov. 20, 1955, Fetis

— 857 =

(INCO); 2% Concepción, Nov. 3, 1956, -F. Silva (INCO); 19 Concepción,

Nov. 1, 1964, Cekalovic (INCO); 19 Concepción, Dic. 26 - 28, 1926, F. £ M.

Edwards (BRIT); 19 Concepción, 1904, P. Herbst (CAS); 13 Laraquete, Nov.

18, 1954, Méndez (INCO); 49 Rafael, Nov. 4, 1962, Plaza (INCO); 13 San

Pedro, Oct. 9, 1959, Cid (INCO); 13 San Pedro, Nov. 28, 1952, Jara (INCO»;

19 NO 1168 Talcahuano, Nov. 15, 1959, Cárcamo (INCO). CURICO: 1g El

Coio, Cord. Curicó, Nov., 1961, Peña (INCO). LINARES: 3gZ La Bolsa, Cord.

Parral, Nov. 26-28, 1960, Peña (INCO); 5 12 (17 gen. prep.) Las Cruces,

Cord. Parral, Nov. 11 -25,1960, Peña (INCO). LLANQUIHUE: 1¿ Puerto Varas,

Dic. 16, 1926, F. £ M. Edwards (BRIT). MAULE: 19 Las Canas, Maule, Nov.

28, 1953, L. E. Peña (USNM); 19 Tregualemu, Maule - Ñuble, Dic. 11, 1953,

L. Peña (OTT). MALLECO: 19 Angol, Nov. 29, 1961, J. Rivas (INCO); 1G

Angol, Nov. 7, 1959, Hernández (INCO); 13% Angol, Ene. 1, 1930 (INCO); 13

Angol, Nov. 24, 1961, Figueroa (INCO); 13% Angol, Dic. 4, 1961, R. Romero

(INCO); 17 Angol, Nov. 13, 1960, Chamorro (INCO); 13 Angol, Nov., 1959,

M. Quiloatrán (INCO); 17 Sierra de Nahuelbuta, 1200 m., W. of Angol, Ene. 3,

1951, R. £ M. (CAS) ÑUBLE: 13 Bulnes, Nov. 18, 1962, Méndez (INCO).

OSORNO: 22 Osorno, Nov. 28, 1937 (USNM); 39 Osorno, Nov. 29, 1964, P.

Casals (INCO); 19 Puerto Octay, Nov. 2, 1956, J. Salgado (INCO); 13 Puerto

Octay, Ene. 19; 1956, E. OB. (INGCO). “SANTIAGO: 1 “Santiago OZ

Faz (USNM). TALCA: 19 Alto Vilches, Cord. Talca, Nov. 21-23, 1964, L. E.

Peña (INCO); 192 mi. N. of Talca, Dic. 22, 1952, R. £ M. (CAS). VALDIVIA:

1 Lanco, Feb. 3, 1962, J. García (INCO); 3Z Nos. 23470, 23473, 23474 y 19

N0 23471 Panguipulli, Valdivia, Dic., 1951 (BRAS); 23 Panguipulli, Ene., 1928,

Engesser S. (BERL), 23 30 km. S. of Valdivia, Ene. 13, 1951, R. £ M. (CAS);

19 Valdivia, Dic. 17, 1954, Sandoval (INCO). Localidad incierta: 19 NO 53.

Rofuco, Ene. 13, 1930, F. Ruiz (USNM). Sin localidad ni fecha: 13 Chile, E.

P. Reed (INCO); 17 N% 2107 y 292 Chile, Philippi S. (BERL).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 501.

DISCUSION. Para la discusión acerca del material identificado por Macquart

en el Museum National d'Histo:re Naturelle, ver discusión de Cratopoda helix.

Los machos son fácilmente separables por la larga pilosidad blanca de las

tibias frontales y por la base de las alas hyalinas; las hembras son difíciles de

separar cuando la micropubescencia café dorada de la pleura toráxica y del dorso

de los tergites ha sido alterada por la presencia de grasa; algunas hembras tienen

abundantes pelos blancos en las tibias anteriores, algunas llegan a tener hasta

más que los machos, pero corrientemente la pilosidad está reducida en ellas a

sólo unos pocos pelos; las hembras son fácilmente confundibles con las hembras

de S. nigriventris.

Las medidas del typo son las de la descripción original; el tamaño menor

del typo comparado con el del material examinado puede deberse a que algunos

— 358 —

individuos presentan el abdómen parcialmente telescopeado; individuos de este

typo no fueron incluídos en las mediciones del material examinado; esta con-

dición del abdómen telescopeado es comón en esta especie.

Stizolestes may (Edwards) n. comb.

(Figs. 393, 444)

Asilus mayi Edwards, 1932, p. 275, Puerto Blest; Hull, 1962, p. 545.

TYPO. G, Puerto Blest, en el British Museum, London, Inglaterra (no

DIAGNOSIS. Mystax negro; alas hyalinas en la base; tibia anterior con

pelos largos, densos y amarillos.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara con micropubescencia plateada,

frente y vertex negruzco; pelos frontales y cerdas ocelares negras. Cabeza en

vista lateral: jiba facial gris; mystax abundante, totalmente negro; pelos de las

antenas negros, barba blanca; pelos en la parte ventral de la proboscis negros;

palpos maxilares negros con pelos negros; vestidura postocular y cerdas occipi-

tales negras. Protórax con pelos blanquecinos, más abundantes en los lóbulos

protoráxicos; cerdas del collar negras. Pleura toráxica com micropubescencia

gris en la mitad inferior, en la mitad superior en su mayor parte café oscura con

algunos escasos pelos blancos y finos o ligeramente oscurecidos, cerdas mesepi-

merales amarillas, con unas pocas cerdas negras entremezcladas. Costados del

postmesonotum con micropubescencia plateada y pelos blancos. Alas hyalinas

en la base, ahumadas en la mitad apical. Coxas y fémures anteriores con abun-

dantes pelos, negros y blancos entremezclados, tibias anteriores con largos y

densos pelos amarillos; tibias rojizas, ápice negro; tarsos negros; cerdas de las

patas débiles, corrientemente cortas y negras. Abdómen con abundantes, largos

y finos pelos blancos en los segmentos 1-3, el resto de los tergites con pelos

cortos, negros en los tergites 7 y 8; pilosidad de los sternites larga, en su mayoría

negra; genitalia (Fig. 393) negra, epandria dos y media vez más largo que

ancho, con pelos negros, unos pocos pelos más largos en el borde basal cerca del

ápice; dististylus corrientemente visible desde el exterior.

HEMBRA. Desconocida.

MEDIDAS. Largo total 18.0 mm. [typo 16.0 mm.]; largo de alas 11.7 mm.;

ancho de alas 3.4 mm. Todos los especímenes estudiados son similares en tamaño.

MATERIAL EXAMINADO. 73%. ARAUCO: 13% Caramávida, Nahuelbuta,

Wi Arauco, 750. m.. Dic, 25-31, 1953, L. E. Peña (INCO); 3 Pichinahuel,

Arauco, 1200 m., Feb., 1956, L. Peña (2 INCO; 1 BRAS); 13 Pichinahuel, Cord.

— 359 —

Nahuelbuta, 1100 - 1400 m., Ene. 31, 1954, L. Peña (INCO). AYSEN: 17 Balma-

ceda, Ene. 17-20, 1961, Peña (INCO). VALDIVIA: 1 Panguipulli, Engesser

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. llustrada en Fig. 444.

DISCUSION. Esta especie (HS) recuerda $. aureomaculatus por el largo de

su cuerpo, el color negro uniforme del mystax y los largos epandria; se dife-

rencian, sin embargo, en el color de la base de las alas, las cuales son blanco

lechosas en aureomaculatus y hyalinas en mayi; los epandria son proporcional.

mente más largos en aureomaculatus. Las medidas del typo son las de la des-

cripción original.

Stizolestes modellus (Bromley) n. comb.

(Figs. 390, 499)

Asilus modellus Bromley, 1932, p. 275, Casa Pangue, Peulla; Stuardo, 1946, p. 85;

Euil1962,4p. 045:

TYPO. ¿, Casa Pangue, en British Museum, Londres, Inglaterra (no visto).

Dos Z paratypos, vistos.

DIAGNOSIS. ¿: alas blanco lechosas en el sexto basal; tibias anteriores

con abundantes pelos largos y amarillos; mystax negro en la parte superior

y amarillo o blanco en el tercio inferior o en la mitad inferior; tibias desde

totalmente negras hasta en su mayor parte rojizas, con el ápice negro.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara muy angosta, corrientemente negruzca, '

algunas veces plateada; frente oscura; pelos frontales y cerdas occipitales negras.

Cabeza en vista lateral: jiba facial negra; mystax negro en la mitad superior, los

pelos de la mitad inferior amarillos o blancos; pelos de las antenas negros; barba

blanca o amarillo oscuro, pelos semejantes a estos en la parte anterior de las

coxas frontales; pelos de la parte ventral de la proboscis blanca o amarillentos;

palpos maxilares negros, pelos negros; área postocular negruzca, vestidura en su

mayoría negra. Protórax con pelos blanquecinos, más densos en los lóbulos pro-

toráxicos. Pieura torácica con grupos de pelos finos y largos, negros o blancos,

o negros y blancos; cerdas mesepimerales amarillas. Mesonotum con micropubes-

cencia plateada, excepto en las líneas centrales y en las manchas laterales, las

cuales lucen negras, scutellum negro, con .micropubescencia plateada en los

bordes y pelos finos y negros en el disco; 10-14 cerdas dorsocentrales poco de-

finidas; 2-3 cerdas notopleurales negras; 1 cerda intraalar negra; 2-3 cerdas

postalares negras; 2-3 pares de fimas cerdas escutelares, mezcladas con varios

pelos de similar color y longitud. Coxas con pelos blancos y negros entremez-

clados; fémures con pelos negros en el dorso y con pelos en su mayoría blancos

— 360 —

en la parte ventral, mucho más largos en los fémures frontales; 3-5 largas

y finas cerdas corrientemente de color rojizo en la parte externa de los fémures

posteriores; fémures anteriores sin cerdas largas bien definidas; tibias amarillo

rojizo, ápice negro, algunas veces toda la tibia negra; tibias anteriores con

abundantes y largos pelos amariilos dirigidos posteriormente, sin cerdas largas

bien definidas; el resto de las cerdas en las patas, débiles y negras. Abdómen

negro, algunas veces café oscuro en el dorso de los tergites; vestidura de pelos

finos, blancos o amarillos en los segmentos 1-3, el resto de los pelos negros,

cortos en el dorso, más largos en los costados y en la parte ventral; costados

de los tergites 4 y 5 con cerdas amarillas. Genitalia semejante a $. atribarbis

(Fig. 389), vestidura de pelos negros.

HEMBRA. Semejante al macho pero con las alas hyalinas en la base, sin pe-

los largos amarillos en las tibias anteriores y el mystax en su mayoría o totalmente

negro; tibias anteriores con 4-5 cerdas largas y negras dirigidas posteriormente

y unos pocos pelos largos y blancos.

MEDIDAS. Largo total 11.2 - 13.5 mm., promedio 13.1 mm. [typo 13.0 mm.]

largo del ala 8.1-9.9 mm., promedio 9.3 mm.; ancho del ala 2.1 -2.7 mm., pro-

medio 2.5 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 543 y 361 9. ARAUCO: 19 Alto Nahuelbuta,

Arauco - Malleco, 1460 m., En. 16, 1954, L. E. Peña (OTT); 19 Caramavida,

Arauco, En. 1-6, 1954, L. E. Peña (OTT); 19 Peillem-Pilli, Cord. Nahuelbuta,

Arauco, 600 - 800 m., En. 1954, L. E. Peña (OTT); 19 Pichinahuel, Cord. Nahuel-

buta, 1100 - 1400 m., Arauco, En. 31, 1954, L. Peña (OT'T). CAUTIN: 69 10 mi.

ME de Bucón, En. 12, 1951,.RK. 8 M. (CAS); 10 12 km. N. E. de. Pucón; En:

12, 1951, R. £ M. (CAS); 292 Radal, Nov. 28-30, 1954, Peña (INCO); 29

Mi km. E. de Temuco, Gautín, En. 1-8, 1951, R. € M. (CAS); 1.9 20: km. E. de

Temuco, En. 7, 1951, R. £ M. (CAS). CONCEPCION: 29 Concepción, Feb. 11,

1962, Mendez (INCO); 29 Concepción, En. 24, 1962, Mendez (INCO); 29

Concepción, En. 18, 1962, Mendez, (INCO); 12 Concepción, Nov. 22, 1955, E.

Bravo (INCO); 19 Concepción, Oct. 3, 1955 J. A. C. (INCO); 19 San Pedro,

MEE? 7257 1956, ¿Gia (INGO);. CURIGO:. 1.2. ¡Gord: Guricó, Feb. 9, 1961;+Peña

(INCO); 32 El Coigo, Cord. Curicó, En., 1961, Peña (INCO); 6 29 El Coigo,

Cord. Curicó, Oct. - Nov., 1959, Peña (INCO); 23 49 El Coigo, Curicó, Nov.,

1959, Peña (INCO); 23 El Coigo, Cord. Curicó, Nov. - Dic.; 1959, Peña (INCO).

LINARES: 69 Cord. Parral, Las Cruces, Nov. 11-25, 1960, Peña (INCO); 29

Cord. Parral, Nov. 26-28, 1960, Peña (INCO); 29 Cord. Parral, En., 1957, Peña

(INCO); 23 82 Cord. Parral, Dic. 1-8, 1960, Peña (INCO); 18% 1682 Cord.

Parral, Dic., 1956, Peña (INCO); 133 1139 Fdo. Malcho, Parral, Dic., 1956, L. E.

Peña (107 912 INCO; 3Z 129 BRIT); 69 Fdo. Malcho, Parral, En., 1957

(INCO); 29 Las Cruces, Dic. 12-14, 1960, Peña (INCO); 27 Las Cruces, Cord.

— 361 —

Parral, Marz., 1959, Peña (INCO); 392 Las Cruces, Cord. Parral, Nov. 11-28,

1960, Peña (INCO); 3gZ- Las Cabras, Cord. Parral, 1400-1600 m., En. 19-29,

1955, L. E. Peña (INCO); 29 Romehual, Cord. Parral, Nov. 5-10, 1960, Peña

(INCO); 23 Villegas, Parral, Linares, Oct. 27 - 30, 1960, Peña (INCO). LLAN-

QUIHUE: 1% Casa Pangue, Llanquihue, Dic. 1926, R. £ E. Shannon (USNM);

19 Ensenada, Llanquihue, Dic., 1926, R. £ E. Shannon (USNM); 19 Puerto

Varas, Llanquihue, Dic. 26, R. £ E. Shannon (USNM). MALLECO: 192 Angol,

Dic. 31, 1950, R. £ M. (CAS); 492 Angol, En. 1, 1951, R. £ M. (CAS); 19 Angol,

Dic. 2, 1935, (USNM); 19 Angol, En. 3, 1962, Figueroa (INCO); 17 La Fusta,

800 m., Malleco, Dic. 9, 1959, Peña (INCO); 29 Lago Icalma, En. 13-17, 1962,

Peña (INCO); 59 Sierra Nevada, Cord. Lonquimay, En. 1 - 5, 1962, Peña (INCO);

49 Sierra de Nahuelbuta W. de Angol, 1200 m., En. 2, 1951, R. £ M. (CAS).

NU'BLEE: 150. Cobquecura; Ñuble, Dic.-14 1955, E: Peña MO TID)MISAas

Cabras, Ñuble, 1400 - 1600 m., En. 16-29, 1955 L. E. Peña (BRAS); 19 Las

Trancas, Ñuble, 1200 m., Feb., 1956, L. Peña (BRAS); 23 Recinto, Ñuble, En.,

1955, L. E. Peña (BRAS); 29 15 km. E. de Saní Carlos, Dic: 23, 1950 2RGA8:0MIk

(CAS); 29 40 km. E. de San Carlos, Dic. 23, 1950, R. £ M. (CAS). OSORNO:

30 30 km. W. de Purranque, Osorno, En. 15, 1951, R. £ M. (CAS). VALDIVIA:

19 30 km. S. Valdivia, En. 13, 1951, R. £ M. (CAS). Localidad incierta: 19

Chile, E. P. Reed (CAS). Sim localidad: 1% (JIM). Argentina: 13 Bariloche,

Río Negro, Nov., 1926, R. £ E. Shannon.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 499.

DISCUSION. Las hembras estudiadas han sido reconocidas por haber sido

colectadas en la misma fecha y localidad de los machos, además por su angosta

y oscura cara y por sus cabezas de tamaño pequeño, de aspecto casi circular desde

una vista frontal. Esta especie es simpátrica, con $. nigriventris, del cual es di-

fícil de separar.

Las medidas del tipo son las correspondientes a la descripción original.

Stizolestes nigriventris Philippi) n. comb.

(Figs. 392, 395-398, 503)

Asilus nigriventris Philippi, 1865, p. 966 (nec nigriventris Bigot, 1878); Williston,

1891, p. 91; Kertesz, 1909, p. 261; Stuardo, 1946, Pp-485.

TYPO, perdido. Se designa como neotypo a un g de Co. Ñielol, En., 1963,

Fetis; este especimen está depositado en el Departamnto de Zoología, Universidad

de Concepción, Chile.

— 362 —

DIAGNOSIS. Macho: los tres cuartos superiores del mystax negro, tercio

inferior amarillento; tibias anteriores con unos pocos pelos largos, blancos o

negros y tres cerdas débiles, negras o amarillas. Alas hyalinas en ambos sexos.

DESCRIPCION DEL NEOTYPO (¿). Cabeza en vista frontal: cara con

micropubescencia dorada ligera, frente gris; pelos frontales negros. Cabeza en

vista lateral (Fig. 395): jiba facial negra; dos - tercios superiores del mystax negros,

tercio basal amarillento; pelos de las antenas negros; barba blanquecina; pelos

de la parte ventral de la proboscis blancos y densos; palpos negros con pelos

negros; área postocular con micropubescencia gris, vestida de finos pelos negros.

Protórax con unos pocos pelos blancos finos; la mayoría de las cerdas del collar

amarillo, algunas negras. Pleura torácica con fina y dispersa micropubescencia

gris, y unos pocos pelos finos, blancos o negros; cerdas mesepimerales amarillas;

una mancha de micropubescencia dorada claramente definida en el metepisternum.

Mesonotum y scutellum con densa micropubescencia plateada, excepto en las

líneas centrales y en las manchas laterales; manchas laterales conectadas entre sí

formando una ancha banda; en vista lateral las líneas centrales y las manchas

laterales lucen café oscuras; 10-12 cerdas dorsocentrales negras, poco definidas;

2 cerdas notopleurales negras; 2 cerdas intraalares negras; 2 cerdas postalares

negras; scutellum con 5 pelos blancos; 3 cerdas scutellares negras. Costados del

postmesonotum con micropubescencia plateada, pelos blancos. Alas hyalinas, ahu-

madas en el cuarto apical. Coxas con pelos blancos, abundantes en la parte ante-

rior de las coxas frontales; fémures con pelos débiles, en su mayoría amarillos;

algunos pelos negros en los fémures anteriores; tibias amarillo rojizo, megras en

el ápice, cerdas fimas, cortas en las tibias posteriores; tibias anteriores con tres

pelos débiles amarillos de largo similar; tarsos negros. Abdómen con micropu-

bescencia café grisácea en el dorso de los tergites y en los sternites; bordes laterales

de los tergites glabrosos, negro azulado; pelos blancos de tamaño mediano en los

tergites 1 y 2, en los costados de todos los tergites y en los sternites; tergites 3-8

con pelos cortos y negros; cerdas en los costados de los tergites amarillas. Geni-

talia (Figs. 392, 397 y 398) negra; pelos negros, unos pocos más largos en el

borde ventral de los epandria; funda del pene como en la Fig. 396.

HEMBRA. Semejante al macho pero el mystax en su mayoría o totalmente

negro; ovipositor similar al de las otras especies del género.

MEDIDAS. Largo total 11.8-16.1 mm., promedio 15.0 mm. [neotypo 15.1

mm.|; largo de ala 7.3-10.2 mm., promedio 9.5 mm. [neotypo 10.1 mm. |; ancho

de ala 2.1-3.0 mm. promedio 2.7 mm. [neotypo 3.0 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 1513 y 1022. ACONCAGUA: 1¿G El Salto,

Aconcagua, Dic., 1933, C. E. Porter (USNM). ARAUCO: 13 12 Contulmo, En.

25, 1906, Schonemann S. (BERL); 13 Contulmo (BERL); 17 Contulmo, Oct.,

— 363 —

1904, Schonemann S. (BERL); 1% Contulmo, Oct. 4, 1903, Schonemamn S.

(BERL); 17 39 Contulmo, En. 25, 1906, Schonemann S. (BERL); 19 Con-

tulmo, Dic. 12, 1904, Schonemann S. (BERL); 1 Contulmo, En. 8, 1902, Scho-

nemann S. (BERL); 1% Contulmo, En. 6, 1904, Schonemann S. (BER) 17

Contulmo, Oct. 26, 1903, Schonemann S. (BERL); 17 Contulmo, En. 9, 1905,

Schonemann S. (BERL); 237 19 Peillem-Pilli, Cord. Nahuelbuta, Arauco, 600 -

800 m., En. 13, 1954, L. E. Peña (OTT); 17 19 Peillem - Pilli, Cord. Nahuelbu-

ta, Arauco, 600-800 m., En. 15, 1954, L. Peña (OT'T); 129 Pichinahuel, Arauco,

1200 m., Feb., 1955, L. Peña (BRAS); 19 Pichinahuel, Cord. Nahuelbuta, 1100 -

1400 m., Arauco, En. 31, 1954, L. Peña (INCO); 1 Caramávida, Arauco, En. 16,

1954, L. E. Peña (OTT); 19 (gen. prep.) Tres Pinos, Feb. 15, 1955, B. Casals

(INCO) AYSEN: 1y Puerto Aysén, Aysén, Instituto Pedagógico (CEE). BIO

BIO: 13 Bellavista, Mulchén (INCO); 1 NO 48 19 NO 47 Mulchén, En., 1928,

F, Ruiz (USNM); 17 El Abanico, Bio Bío, Dic. 30, 1950, R. £ M. (CAS); 19

5 km: W. de Tucapel, Bío Bío, Dic. 28, 1950, R. € M. (CAS). CAUTIN: 63

[1 neotypo] 129 Co. Ñielol, Temuco, En. 3, 1963, Fetis (INCO); 23 10 mÉ

NE: de Pucón, Chile, En: 12, 1951; KR. € M"(CAS); TO "12 km. "N E de puc

380 m:, En. 12, 1951, R. 8 'M: (CAS); 12 “Temuco, En: 1909/*P “Herbserlasa

33 29 20 km. E: de Temuco, En. 7, 1951 (CAS) 13 Temuco; Feb Pan

(USNM); 19 Temuco, Sept. 12, 1936 (INCO). CHILOE: 27 12 Ancud, Isla

Chiloé, Dic., 1926, R. £ E. Shannon (INCO); 19 Aucar, Chiloé, En. 6-15, 1952,

E. E. Peña (INCO); 1 Tg9 :(cópula), Castro, Dic. 12-18, 19107 PAABERS

(INCO); 19 Dalcahue, Isla Ch:loé, Feb., 1961, L. Peña (INCO). CONCEPCION:

19 Coelemu, Fib. 1, 1954, Hillers (INCO); 19 NO 1179 Coelemu, En. 2, 195%

Hillerns, (INCO); 19, Coelemu, En. 5, 1957, Hillerns (INCO); 13 Concepción,

Nov. 1904, P. Herbst (CAS); 13 Concepción, 1903, P. Herbst (CAS); 23 Con-

cepción, Schonemann S. V. (BERL); 177 39 Concepción, En. 24, 1962, Méndez

(INCO); 33 Concepción, En. 3, 1958, J. O. R. (INCO); 1% 12 Concepción,

En. 25, 1962, Méndez, (INCO; 13% Concepción, Nov. 4, 1956, J. O. R. (INCO»;

1 Concepción, En. 20, 1962, Méndez (INCO); 17 NY 1182 Concepción, En.

27, 1958, J. O. R. (INCO); 183 139 Concepción, Feb. 18, 1962, Méndez (INCO»;

23 19 Coronel, En. 7, 1962, Artigas (INCO); 192 Chiguayante, En. 7, 1962,

Méndez (INCO); 1 NO 1184 Florida, Nov. 19, 1957, J. ARRAINCO NAS

Lota, Dic. 15, 1958, L. Ramírez (INCO); 1% (gen. prep.) San Pedro, Nov. 24,

1956, Cid. (INCO); 12 San Pedro, Nov. 15, 1956, Cid (INCO); 13 SanPedro, |

En. 29, 1957, J. KR. (INCO). COQUIMBO: 8 292 Chigualoco, Nov. 27 - 28,

1964, Herrera (43 292 INCO; 4G CEE); CURIGCO: Lg. Coigual, (Guruicó?

1400-1600 m., En. 13, 1955, L. E. Peña (BRAS)-2. El Coigo, Curicó. Ens

1961, Peña (INCO); lg El Coigo, Curicó, Feb., 1961, Peña, (INCO). LINARES:

103 Cord. Parral, Vic. 1-8, 1960, Peña (INCO); 13 Cord. Parral, Dic., 1950,

Peña (INCO); 1gZ 19 Cord. Parral, Dic., 1956, Peña (INCO); 13 Estero Leiva,

Cord. Parral, En. 8-12, 1953, Barros - Peña (INCO); 192 Fdo. Malcho, Cord,

— 364 —

Parral, Dic., 1950, 1.. E. Peña (INCO); 1 Fdo. Malcho, Cord. Parral, En., 1957,

Peña (INCO); 13 Fdo. Malcho, Parral, Dic., 1956, L. E. Peña (INCO); 5gZ

49 Fdo. Malcho, Parral, En., 1957, L. E. Peña (INCO); 13 Las Cruces, Cord.

Parral, Dic. 12-14, 1960, Peña (INCO). LLANQUIHUE: 1% Ensenada, Llan-

quihue, Dic. 14-15, 1926, F. £ M. Edwards (BRIT); 17 Peulla, Llanquihue,

Dic. 12-18, 1926, F. £ M. Edwards (BRIT); 3g Puerto Montt, Llanquihue,

Dic., 1926, R. £ M. Shannon (INCO); 43 Puerto Montt, Llanquihue, Dic., 1926,

R. £ E. Shannon (USNM); 19 Puerto Varas, Llanquihue, 1926, R. £ E. Shannon

(INCO); 3Z 12 Puerto Varas, Llanquihue, Dic., 1926, R. X E. Shannon (INCO).

MALLECO: 12 Angol, Nov. 26, 1959, M. Quilotran (INCO); 1% Angol, Nov.

1, 1961, M. Klacker (INCO); 13 Angol, Nov. 17, 1958, Soto (INCO); 19 Angol,

Nov. 27, 1961, Figueroa (INCO); 1% Angol, Dic. 10, 1961, B. Bustos (INCO»;

13 Angol, Now., 1961, Muñoz (INCO); 1% Angol, Dic. 17, 1961, Péndola

(INCO); 17 Angol, Dic., 1959, G. Moller (INCO); 13 Angol, Dic. 3, E. Sal-

gado (INCO); 13 Angol, Dic. 7, 1961, E. Riquelme (INCO); 13 Angol, Dic. 8,

German Hueras (INCO); 13% Angol. Nov. 8, 1964, N. San Martín (INCO); 1GZ

Angol, Dic. ”, 1959, B. Carvallo (INCO); 13 Angol, Dic. 9, 1961, J. Muñoz

(INCO); 137 Angol, Nov. 11, 1961, E. Salgado (INCO); 13 Angol, Dic. 3, 1959,

R. Paredes (INCO); 13% Angol, En. 3, 1962, Figueroa (INCO); 13< Angol, Dic.

4, 1959, B. Carvallo (INCO); 1% Angol, Dic. 1, 1961, Péndola (INCO); 1G

Angol, Nov. 10, 1960, M. Morales (INCO); 13 Angol, Oct. 26, 1958, G. Con-

treras (INCO); 13 (gen. prep.) Angol, Dic. 26, 1927 (INCO); 13 Angol, Oct. 26,

1956, O. Fetis (INCO); 19 Angol, Dic. 8, 1960, R. Sienemann (INCO); 12

Angol, Nov. 28, 1960, E. Sandoval (INCO); 19 Angol, Dic. 6, 1956, O. Fetis,

(INCO); 1 Angol, Nov.-19, 1958, S. Pérez (INCO); 1 2- Angol, Nov. 28, 1960,

Núñez (INCO); 13 Angol, Dic. 7, 1959, E. Montoya (INCO); 19 Angol, Nov.

18, 1958, E. Vegas (INCO); 13 Angol, Dic. 6, 1959, A. Paredes (INCO); 1G

Angol, Oct. 3, 1956, O. Fetis (INCO); 19 Angol, Dic. 9, 1940, M. Rebolledo

(USNM); 192 Angol, En. 1, 1930 (USNM); 1% Angol, Nov., 1940, P. A. Berry

(USNM); 19 Angol, Dic. 7, 1937 (USNM); 17 NO 394, Dic. 26, 1927 (USNM);

1G Angol, Oct. 8, 1937, Vega (USNM); 23 Angol, En. 1, 1951, R. £ M. (CAS);

LO Angol, Dic. 31, 1950, R. £ M. (GAS); 19 Angol, Malleco, En., 1951, E. E.

Peña (BRAS); 13 Angol, Dic. 5, 1934 (USNM); 13 Angol, Nov. 1, 1934 (USNM);

13 Angol, Dic., 1937 (USNM); 13 Angol, Aug. 14, 1937 (USNM); 13 Angol,

Die 8,1957 (USNM); Lg ¿Amgol, Nov...7,.-1934,.D..S. Bullock. (USN.M); 19

Angol, Nov. 25, 1935, D. S. Bullock (USNM); 12 Angol, Nov., 1940, P. A. Berry

(USNM); 12 Angol, Dic. 26, 1927 (USNM); 19 Angol, Dic. 5, 1935 (USNM);

os Angol Marz 6,1941. BP. A, Berry (USNM);. 1. - Angol; Dic..'9, 1939 D58;

Bullock (USNM); 13 Angol, Dic. 7, 1929, (USNM); 1 19 Calletue, 1963,

Dr. Reed (CAS); 19 Calletue, En., 1932, Dr. Reed (CAS); 1% Curacautín,

Malleco, 521 m., Dic. 19-21, 1950, L. E. Peña (INCO); 13 Sierra de Nahuelbuta,

W. de Angol, 1200 m., En, 2, 1951 (CAS). ÑUBLE: 1¿g Chillán, Dic. 16, 1961,

— 365 —

Artigas (INCO); 1% 12 Los Cipreces, 1000 m., Ñuble, En. 19, 1955, L. E.

Peña (BRAS); 192 Recinto, Ñuble, Feb., 1955, L. E. Peña (BRAS); 11 29

15 km. E. de San Carlos, Dic. 23, 1950 (CAS); 23 194 San Carlos, Dic. 25,

1950, R. Cortés (CAS); 192 18 km. E. de San Carlos, Dic. 24, 1950 (CAS); 13

15 km. E. de San Carlos, Dic. 28, 1960 (INCO); 13 29 San Fabián de Alico,

Ñuble, En., 1954, L. Peña (BRAS). O'HIGGINS: 19 Peumo, Nov., 1952, E. O. B,

(INCO). OSORNO: 23 39 Pto. Octay, Nov. 2, 1956, J. Salgado (INCO); 1G

30 km. W. de Purranque, En. 15, 1951 (CAS); 17 30 mi. W. de Purramque,

Osorno, En. 16, 1951 (CAS); 13 Osorno, Nov. 26, 1937 (USNM). SANTIAGO:

19 Las Condes, Santiago, Nov., 1959, Peña (INCO); 1g Peñalolén, Santiago,

Nov. 28, 1954, L. E. Peña (BRAS). TALCA: 19 Alto Vilches, En. 17, 196%

L. E. Peña (INCO); 13 N9 50 Las Mercedes, En. 10, 1936, F. Ruiz (INCO);

29 49 -22 mi. N. de Talca, Dic. 22, 1950, R. € M. (CAS). VALDIVIA O

Lanco, Feb. 3, 1962, J. García (INCO); 1 (gen. miss.) NO 20327, Panguipulli,

En., 1945 (BRAS); 19 Valdivia, Marz. 15, C. S. Reed (USNM). VALPARAISO:

1 Algarrobo, Valparaíso, Sept. 24-27, 1950, L. Peña (INCO); 13 Alhue, Dic.,

1929, Dr. Reed (CAS); 192 Quillota, Las Palmas, Nov. 20, 1954, L. Peña (BRAS);

19 Reñaca, 1932, Dr. Reed (CAS); 23 S. Siope Bell Mtn. 3000 f., Dic. 17, 1950,

R. Xx M. (CAS); 13 Valparaíso, Dr. Reed (CAS); 13 Valparaiso, A. Faz (USNM).

Sin localidad ni fecha: 13 12 Chile, Philipp: (BERL); 17 NO 22 12 Chile,

DraReecd (CAS) 431069 Chile, FEB Reed (GAS):

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 503.

DISCUSION: Variaciones en el color de los pelos y cerdas son comunes,

corrientement variaciones a blanco, amarillo, o rojizo; el mystax presenta general-

mente el tercio basal amarillento pero a veces sólo presenta amarillos o blan-

quecinos unos pocos pelos en la part más inferior del borde oral; la micropu-

bescencia café grisácea del dorso de los tergites está a menudo oculta en los

especimenes engrasados, en algunos, tal vez individuos de más edad, ésta falta.

Una serie de 8 y 29 de Chigualoco presentan las tibias negras.

El nombre nigriventris ha sido usado 7 veces para nombrar asílidos además

de St zolestes nigriventris (Ph 'lippi): Dasypogon nigriventris Dufour, 1833, Es-

paña; Proctacanthus nigriventris Macquart 1838, America Septentrionalis [N.

América]; Hirmoneura nigriventris Macquart, 1849, Tasmania; Mallophora ni-

griventris Jaenn'ke, 1867, Paraguay; Stenopogon nigriventris Loew, 1868, Asia

Menor; Lochites nigriventris Bigot, 1878, Chile [ver Deromyia] Dioctria nigri-

ventris Strobl, 1902, Europa meridionalis [Sur de Europa].

La designación de As.lus nigriventris Philippi por Hull como genotypo de

Stizolestes, está aparentemente basada en una identificación errada,

— 366 —

Stizolestes pamponeroides (Edwards) n. comb.

Figs. 399, 502)

Asilus pamponeroides Edwards, 1932, p. 277, Fig. 26, Ancud; Stuardo, 1946, p. 85;

Hui 1962, p.-545:

Asilus nigriventris Philippi. Hull, 1962, p. 560.

Stizolestes nigriventris (Philippi). Hull, 1962, p. 561, Figs. 210, 773, 1528, 1587,

222 IL, 2351, 2407 y" 2410:

TYPO. GZ, Ancud, en el British Museum, Londres, Inglaterra (no visto).

DIAGNOSIS. Machos: mystax totalmente negro; alas con el tercio basal

blanco lechoso; tibias y basitarsos anteriores con un denso manchón de pelos

con forma de escobilla, blanco o amarillo, dirigido anterolateralmente, formando

un ángulo de 450 con la tibia.

MACHO. Cabeza en vista frontal: cara y frente con micropubescencia pla-

teada, corrientemente con una mancha dorada entre las antenas y el mystax;

pelos frontales negros. Cabeza en vista lateral: jiba facial negruzca; mystax total-

mente negro; barba blanca o amarillo oscuro, semejante al color de los pelos de

la parte anterior de las coxas y tibias anteriores; pelos de la parte ventral de

la proboscis abundante, largos, semejante al color de la barba; palpos maxilares

negros con pelos negros; área postocular negra, plateada en los bordes de los

ojos, vestidura negra. Protórax con fina vestidura negra, blanca y más densa en

los lóbulos protorácicos. Pleuras torácicas con algunas pequeñas manchas de mi-

cropubescencia dorada, una muy bien definida en la base del metepisternum;

pelos finos, largos y dispersos, megros. Mesonotum con micropubescencia dorada,

excepto en las líneas centrales y en las manchas laterales las cuales lucen negras;

micropubescencia gris en los callos posteriores y en el área posterocentral; scute-

llum negruzco, pelos negros; 12-20 cerdas dorsocentrales negras poco definidas;

2 cerdas notopleurales negras; una cerda intraalar negra; 2 cerdas postalares

negras; 3-4 pares de cerdas scutellares negras. Costados del postmesonotum con

micropubescencia plateada y pelos blancos y negros entremezclados. Alas blanco

lechosas en la parte basal, especialmente en las celdas basales y anales; mitad

apical ahumada. Coxas con pelos blancos, negros y amarillos entremezclados;

pelos de los fémures en su mayoría negros, erectos en los fémures anteriores;

tibias amarillo rojizas con el ápice negro, algunas veces las tibias posteriores son

totalmente negras, las tibias anteriores con 3-4 cerdas largas y finas, negras, y

unos pocos pelos largos; un denso mechón en forma de escobilla de pelos blancos

o amarillos de tamaño mediano en el costado del tercio apical; tarsos negros.

Abdómen negro brillante, vestidura de pelos blancos y erectos en los segmentos

1 - 3, negros en los segmentos restantes, más cortos en los tergites 4-8. Genitalia

nera; epandria cortos, una vez un cuarto a una y media vez más largos que

anchos; vestidura negra, pelos largos en el borde ventral cerca del ápice.

— 367 —

HEMBRA. Semejante al macho pero las alas hyalinas en la base y el mechón

de pelo en forma de escobilia de las tibias y basitarsos anteriores, menos des-

tacado que en los machos, en algunas apenas perceptible; ovipositor como en la

figura 399. X

MEDIDAS. Largo total 13.5- 17.3 mm., promedio 15.8 mm. [typo 16.0 mm.]);

largo del ala 9.2-13.1 mm. promedio 11.1 mm. [typo 13.0 mm.]; ancho del ala

2.3-3.1 mm., promedio 2.7 mm.

MATERIAL EXAMINADO. 263 692. ARAUCO: 1 Contulmo, Oct. 4,

1903 (INCO); 13 Contulmo, Dic. 22, 1904 (BERL); 1g Contulmo, Oct. 17,

1904 (BERL); 1 Contulmo, Oct. 7, 1903 (BERL); 23 Contulmo, Oct. 9, 1903

(INCO;BERL); 23 Contulmo, Oct. 15, 1904 (BERL); 192 10 mi. N. E. de

Pucón, En. 12, 1951, R. £ M. (CAS). CHILOE: 2G Ancud, Dic. 18, 1926, R.

£ E. Shannon (INCO). CONCEPCION: 1 Concepción, P. Herbst, 1903 (CAS);

13 Concepción, Dic. 20, 1955, J. A. C. (INCO); 13 Concepción, Nov. 12, 1955,

E. Bravo (INCO); 13 Concepción, Nov. 6, 1957, P. Alister (INCO); 194 Con-

cepción, Dic. 15, 1956, J. A. C. (INCO); 13 Concepción, Dic. 5,1955, C. Aguayo

(INCO); 192 Concepción, Jun. 10, 1955, Voldoin (INCO); 23 o 29 Concep-

ción, Oct. 8, 1956, Cid, (INCO); 12 Concepción, Nov. 22, 1955, E. Bravo

(INCO); 13 Florida, Oct. 15, 1955, Casan (INCO); 23 Laraquete, Oct. 18,

1964 (INCO); 1% Lag. San Pedro, Nov., 1963, "T. Cekalovic (INCO); 1G

San Pedro, Nov. 24, 1956, Cid (INCO); 19 San Pedro, 10, 1956, Cid (INCO);

1g San Pedro, Nov. 9, 1956, Cid (INCO); 1g¿ Talcahuano, Sept., 1955, C.

Mergrin (INCO); 19 Talcahuano, Sept. 26, 1934 (USNM). VALDIVIA: 17

Corral, Dic. 7, 1910, R. Paesler (USNM). VALPARAISO: 13 Valparaíso, Dr.

Reed (CAS).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA. Ilustrada en Fig. 502.

DISCUSION. Los machos son fácilmente reconocibles por la base blanco

lechosa de las alas y el mechón de pelos en las tibias y basitarsos anteriores;

las hembras pueden ser reconocidas cuando el mechón de pelos de las tibias

y basitarsos anteriores es reconocible, cuando no es reconocible, estas hembras

pueden ser fácilmente confundidas con las hembras de $. modellus y S. aureoma-

culatus (ver descripción de la hembra de aureomaculatus).

ZO TICUS-= Usen

TYPO DEL GENERO: Zoticus toconaoensis n. sp.

Cabeza en vista frontal dos - séptimos más ancha que alta; vertex profunda-

mente excavado y angosto; ocellarium bajo, ocelos grandes. Cabeza en vista

frontal: área postocular un-séptimo del ancho del ojo; jiba facial larga, bien

— 368 —

desarrollada, ocupando cuatro - quintos de la cara, borde frontal ligeramente

curvado, casi derecho; antenas largas, primer segmento una y media vez el largo

del segundo; tercer segmento una vez un cuarto el largo del primero, compri-

mido; stylo terminal tres - cuartos del largo del tercer segmento, con una corta

espina terminal (Fig. 400); mystax abundante, largo y denso, naciendo de toda el

área dorsal de la ¡ba facial. Mesonotum con las líneas centrales y las manchas

laterales definidas; vestidura de pelos cortos y dispersos, algunos más largos

detrás de la sutura uransversa; 6-8 largas cerdas dorsocentrales. Scutellum con

pelos largos, ligeramente curvados hacia la cabeza; 4-5 pares de largas y gruesas

cerdas scutellares. Costados del postmesonotum solamente con micropubescencia,

sin pelos. Celdas marginal y cuarta posterior cerradas y pediceladas; R, termina

antes del ápice del ala; R, termina detrás del ápice del ala; celda anal cerrada,

con un corto pedicelo: M, y m forman un ángulo de 1009. Espina de las tibias

anteriores ausente; fémures anteriores con cerdas. Abdómen más o menos ci-

líndrico, ligeramente atenuado en los machos, más bien comprimido en las

hembras; cerdas gruesas en los costados de los tergites y en los bordes poste-

riores de los sternites. Las alas no alcanzan el ápice del abdómen. Genitalia del

macho de tamaño moderado, mo rotada; hypandrium corto, con una emargina-

ción rectangular en el centro del borde posterior; epandrium largo, con una

emarginación y un proceso digitiforme en el borde posterior; gonopodos cortos,

globosos (Figs. 403 y 404). Ovipositor comprimido, en forma de lámina (Fig. 401),

incluye el segmento 7.

El nombre Zoticus se refiere a los rápidos movimientos característicos de

este grupo (Zurixkos = Vivaz).

DISTRIBUCION. Neotropical (Chile), 1 especie, Zoticus toconaoensis n. sp.

Este género es semejante a Atractocoma y Megametopon. Difiere de Atracto-

coma por tener el primer tergite completo y la vena R, no angulada en la base;

los pelos del cuerpo en Atractocoma, son claramente fusiformes, en Zoticus son

normales. Difiere de Megametopon, entre otros caracteres, por presentar cerdas

en los fémures anter.ores; en Megametopon hay solamente pelos largos, a veces

gruesos, en los fémures anteriores.

Zoticus toconaoensis n. sp.

(Figs. 400 - 405, 489)

TYPO. G, de Toconao, 2480 m., Mar. 1954, L. Peña; este especimen está

depositado en el Departamento de Zoología de la Universidad de Concepción,

Chile.

— 369 —

DIAGNOSIS. Cuerpo en su mayor parte grisáceo; fémures negros, tibias café;

pelos y cerdas del cuerpo y de las patas, blancas; mystax blanco o de pelos negros

y blancos entremezclados; genitalia del macho negra; sternite 8 corto, con pelos

negros o blancos y negros entremezclados en el borde posterior.

DESCRIPCION DEL TYPO (£). Cabeza en vista frontal: cara uniforme-

mente cubierta por densa micropubescencia plateada, frente en su mayor parte

negra brillante, con una pequeña área de micropubescencia gris a lo largo de

los bordes laterales y sobre el ocellarium, ocelos amarillentos; pelos frontales

en su mayoría blancos, con unos pocos pelos más largos entremezclados; cerdas

ocelares negras, divergentes. Cabeza en vista lateral (Fig. 400): jiba facial gris;

mystax blanco; antenas negras, primero y segundo segmentos con pelos blancos

y negros entremezclados, visiblemente más largos en la parte ventral; barba blan-

ca; área postocular cubierta de densa micropubescencia gris, vestidura de finos

pelos blancos; cerdas postoculares amarillas; cerdas occipitales blancas, proclina-

das, entremezcladas con abundantes pelos largos y blancos, más densos en el

vertex; proboscis negra con finos y largos pelos blancos dispersos en la parte

ventral, pelos cortos y amarillos en el ápice; palpos maxilares negros con pelos

blancos. Protórax negro brillante con micropubescencia blanca dispersa y pelos

blancos; cerdas del collar blancas. Pleuras torácicas desuniformemente cubiertas

por micropubescencia plateada y unos pocos pelos finos y blancos; cerdas mese-

pimerales blancas. Mesonotum con micropubescencia gris, excepto sobre las líneas

centrales y las manchas laterales, vestidura de cortos pelos blancos dispersos, más

largos en la parte posterocentral donde se mezclan con unos pocos pelos negros;

scutellum con micropubescencia semejante a la del mesonotum y pelos largos y

blancos, dispersos ; 8 cerdas dorsocentrales blancas; 2 cerdas notopleurales blan-

cas; 1 cerda intraalar blanca; una cerda postalar blanca; 4 pares de cerdas escute-

lares blancas. Costados del postmesonotum con micropubescencia plateada. Alas

(Fig. 402) hyalinas; venas café, más claras en las áreas costal y basal. Coxas

semejantes en cobertura a las pleuras torácicas, con pelos finos y cerdas blancas,

los pelos y las cerdas son más abundantes en la parte anterior de las coxas

frontales; fémures negros brillantes, la mayoría de los pelos muy finos, dispersos,

comprimidos; cerdas gruesas y blancas; tibias y tarsos en su mayor parte café,

las tibias medianas más oscuras en algunas partes, cobertura y cerdas semejantes

a las de los fémures. Uñas negras o rojizas en la base. Abdómen uniformemente

cubierto con micropubescencia gris; centro de los tergites en vista dorsal de

apariencia oscura; vestidura de cortos pelos blancos, más largos en los costados

del primer tergite; cerdas blancas en los costados de los tergites y en el borde

posterior de los sternites; un mechón de pelos negros aplastados en el borde

posterior del esternite 8 (Fig. 404). Genitalia negra brillante (Fig. 404), pelos blan-

cos, una fila de cerdas blancas en la parte ventral de los epandria; epandria

largos con un proceso dorsodistal; gonopodos e hypandrium (Fig. 403) cortos;

funda del pene según se ilustra en la Fig. 405.

— 370 —

HEMBRA. Semejante al macho; ovipositor (Fig. 401) café oscuro brillante

o negro, pelos amarillentos.

El nombre toconaoensis se refiere a la localidad del typo.

MEDIDAS. Largo total 10.2 - 14.4 mm., promedio 13.1 mm [typo 12.5 mm.|;

largo del ala 8.1-9.2 mm., promedio 8.7 mm. [typo 8.6 mm.]; ancho del ala

2.3-2.9 mm. [typo 2.8 mm.].

MATERIAL EXAMINADO. 133 y 71%. ANTOFAGASTA: 13% Encrucí-

jada, Antofagasta, Dic. 2, 1961, Peña (INCO); 1 19 Laguna Verde, límite

Antofagasta, Dic. 1, 1959, Inst. Pedagógico (1 CEE; 19 INCO); 17 19 Salar

Pujsa, Cord. Antofagasta, 4500 m., Dic. 15, 1952, L. Peña (1 BRAS; 12 INCO);

13 San Pedro de Atacama, 2436 m., Antof., Dic. 9, 1952, L. Peña (INCO); 1G

19 Tumbre, Dic. 15, 1961, Peña (INCO); 3Z Tumbre, Antofagasta, Feb., 1953

(2 MNHN, 1 INCO); 13 [typo] Toconao, 2480 m., Marz., 1954, L. Pena (INCO).

192 Tilomonte, 2.400 m., Dic. 8, 1966, Etcheverry (INCA); 17 Tumbre, Feb. 12,

1966, Soza (CEE); 12 Río Salado, Dic., 9, 1966, Herrera (INCO); 2Z 22

(2 cópulas) Aguas Calientes, Nov. 12, 1966, Etcheverry (INCO); 13 Mucar, Ene.,

18, 1967, L. Peña (INCO).

DISCUSION. Las variaciones más importantes son las del color de las cer-

das mesotonales y occipitales, las cuales son blancas en el typo (de Toconao) y

negras en el resto de los especímenes. El mystax puede ser blanco o bicolor (la

parte superior negra y la inferior blanca o amarillenta); la cubierta del meso-

notum varía del gris al amarillo y las manchas laterales pueden o no estar

cubiertas por estos colores.

ESPECIES INCERTAE SEDIS

Entre el material estudiado, no han sido reconocidas 9 especies descritas

para Chile. El material tipo está perdido, su lugar de depósito es desconoc:do

o el material no es obtenib:e, o también, la información dada en la descripción

original es insuficiente para reconocerlos. Algunos géneros registrados en esta

sección son válidos, pero ellos no ocurren en Chile, por lo tanto las especies

indicadas pertenecen a otros géneros. Es posible que la mayoría de estas especies

sean sinónimos de otras especies reconocidas o de algunas de las descritas corno

nuevas especies en este trabajo. Estas especies son: AÁsilus megastylus Philippi,

Asilus poecilopus Phil:ppi, Atomosia modesta (Phuippi), Dasypogon punctipennis

(Philippi), Dasypogon latus Philippi, Promachus spissibarbis (Macquart), Saropo-

gon carbonartus Phisippi, Scylaticus n:tidigaster (Macquart) y Stichopogon ocrealis

(Rondani).

— 371 —

A continuación se anota para tada una de estas especies la sinonimia

(según otros autores), la localidad del typo (cuando conocida) y la descripción

original, con la parte diagnóstica en latín original y la descripción traducida

al español por el autor.

Asilus megastylus Philippi

Asilus megastylus Philippi, 1865, p. 697, Santiago, Illapel; Stuardo, 1946, p. 85;

ult 19627 p.545.

TYPO. Perdido.

DESCRIPCION ORIGINAL DE PHILIPPI: “A. megastylus Ph. Á. cinereus,

facie alba, mystace albo vel cum setis nigris mixto; antennarum nigrarum seta

elongata; thorace fusto-vittato, antice pilis brevibus, postice longioribus nigris ves-

tito; abdomine glabriusculo; pedibus cinereis, tibiis tarsisque plus minus ferrugi-

neis. Long. 6 lin., extens. alarum 9 lin. Prope Santiago cepi, et et [sic] itinere

Hlapelino ottulit orn. Landbeck.

Los pelos torácicos son casi idénticos a los de A. poecilopus, pero el color

es menos café, más bien es gris. Al abdómen le faltan las cerdas en los costados

de los segmentos posteriores, o ellas son muy cortas. El mystax no es negro

como en poecilopus, sino totalmente blanco, o blanco entremezclado con algunas

cerdas negras. El tercer segmento antenal es corto y ancho, apenas una y media

vez más largo que ancho, oviforme, puntudo; la fina cerda es casi dos veces el

largo del tercer segmento y más ancha en el ápice. Las alas son totalmente hyali-

nas. Los forceps del macho no son más anchos que el último segmento abdominal,

sin embargo son muy largos” (Traducido del alemán).

La información relativa al largo de los forceps (epandria), es semejante a la

de los machos de Stizolestes aureomaculatus (Fig. 385).

Asilus poecilopus Philippi

Asilus poecilopus Philippi, 1865, p. 697, Valparaíso, llapel; Williston, 1891, p. 91;

Kertesz, 1909, p. 262; Bromley, 1932, p. 281; Stuardo, 1946, p. 85; Hull, 1962,

pi DAS:

TYPO. Perdido.

DESCRIPCION ORIGINAL DE PHILIPPI: “A. poecilopus Ph., A. murinus;

facie albida, mystace antennisque nigris; thorace fusco-vittato, setis mollibus, antt-

cis brevibus; nigris vestito; femoribus lerumque cinereis, tibiis tarsisque ferrugineis.

Long. 71), lin., extens. alarum 13 lin. Valparaiso. Illapel. Semejante y fácil de con-

—]

fundir con A. valdivianus, pero separado por las siguientes características: el tercer

segmento antenal ovoide, mucho más ancho que el segmento anterior; barba y

pelos occipitales de color blanco puro; tórax más claro pero las líneas menos

definidas, los costados de gris claro, la pubescencia más corta, menos abundante

especialmente en la mitad anterior del tórax la cual está cubierta por cortas

cerdas dirigidas posteriormente, no con largos y densos pelos suaves; tarsos y

tibias anteriores amarillas, tibias posteriores amariilas en la base y gris hacia

el ápice, fémures anteriores amarillos o solamente con un anillo gris, fémures

posteriores grises con la base amarilla. El abdómen está cubierto de cortos pelos

negros, muy comprimidos en un especímen gris, con 3 líneas café, en el otro ne-

gruzcas. Los 2 especimenes son hembras” (Traducido del alemán).

Atomosia modesta (Philippi)

(Fig. 406, según Phi:lippi)

Laphria modesta Philippi, 1865, p. 685, Santiago, Fig. (en texto); Schiner, 1866,

p. 706.

Atomosia modesta (Philippi). Lynch, 1882, p. 144; Stuardo, 1946, p. 83; Hull,

1962, Po 913.

TYPO. Perdido.

DESCRIPCION ORIGINAL DE PHILIPPI: “L. nigra, facie, maculis im pec-

toris lateribus et plurumque incisuris abdominis argenteis; barba alba; tibiarum

anticarum bast genubusque fulvis; alis hyalinis. Long. corp. 31/, lin., extens. alarum

11), lin. In prov. Santiago occurrit. Vertex negro, frente gris; ambos cubiertos

con unas pocas cerdas. Cara blanca plateada, sin una jiba facial central desa-

rrollada. Tórax dorsalmente cubierto de finos vellos comprimidos anaranjados,

que no ocultan el color negro y con dos manchas plateadas que presentan reflejos.

Abdómen desnudo, negro aterciopelado con los bordes angostos blancos en los

segmentos, formando una mancha plateada en los costados del segundo y tercer

segmento. Patas cortas y gruesas, fémures con largos y finos pelos dispersos,

tibias con dos filas de cerdas blancas separadas. Las características de la vena-

ción del ala se muestran más claramente en la presente figura que lo que podría

ser descrita con palabras, y de acuerdo con esto será posible a los entomólogos,

familiarizados con la nueva literatura, clasificar esta especie en el género ade-

cuado. Las estructuras sexuales del macho espero describirlas posteriormente

cuando tenga tiempo” (Traducido del alemán).

De acuerdo con la figura de Philippi (Fig. 406), la especie posee una vena

extra entre M, y M, + Cu,, que dividen la tercera celda posterior en dos celdas.

Esta especie, de acuerdo con la descripción original y su figura, no es aparente-

mente Atomosia, Laphria ni Andrenosoma. Solamente Philippi vio el typo; Schi-

— 373 —

ner, Lynch, Stuardo y Hull, simplemente incluyeron el nombre de estas espe- -

cies en sus listas. Philippi (1865: 691) anota que su nueva especie Dasypogon--

sericeus (ahora Lamprozona auricincta Loew), se parece a Laphria modesta; es

posible que se trate de una misma especie, o también, considerando el color

de las tibias anteriores, esta podría ser Lamprozona chilensis (Hermann).

Dasypogon punctipennis Macquart

Dasypogon punctipennis Macquart, 1838, p. 46, Chile; Blanchard, 1852, p. 365,

Chile; Stuardo, 1946, p.. 82;: Hull, 1962, p. 228.

TYPO. Perdido.

DESCRIPCION ORIGINAL DE MACQUART: “Dasypogon punctipennis,

Nob. Ater. Alis fusco punctatis. Long. 61% l. $. Cara y frente con vello gris. Mys-

tax negro; algunas cerdas blancas en la parte inferior. Barba blanca. Antenas, con

pelos blancos. Tórax con un ligero vello gris, más denso en los costados. Abdómen

con vello gris en los costados, patas [sic] negras, con vello gris y cerdas negras;

fémures anteriores y medianos testáceos, con cerdas amarillas. Alas bastante claras;

venación débilmente bordeada de café; una mancha café en la base de las celdas.

De Chile. M. Gay. Colección de M. Serville” (Traducido del francés).

Esta especie no es Hypenetes punctipennis (Philippi).

Dasypecus latus (Philippi)

Dasypogon latus Philippi, 1865, p. 686, Illapel.

Dasypecus latus (Philippi). Bigot, 1878, p. 220; Stuardo, 1946, p. 81; Hull, 1962,

PRESO:

IPPO Perdido:

DESCRIPCION ORIGINAL DE PHILIPPI: “D. latus Ph. D. latus, omnino

niger; pilis verticis baseosque antennarum albidis; thorace in parte antica pilis

flavis appressis tecto; in postica nitidissimo, chalybeo; abdominis dorsonitidissimo,

glaberrimo, fere aeneo-micante, lateribus albido-hirsutis; alis infumatis. Long. corp.

5 lin., extens. alar. 81/, lin. Ex itinere Illapelino. El primer segmento antenal, el

vértex y el occipucio, cubiertos de largos pelos blancos. El ápice del stylo parece

ser tan ancho como el tercer segmento a pesar de las dificultades para reconocerlo.

En los costados del tórax, sobre la base de alas y a lo largo del borde posterior del

scutellum hay largos pelos sedosos. Pelos de los costados del abdómen más cortos

y más arectos, desapareciendo hacia la parte dorsal. Los fémures y tibias, cu-

biertos con largos y densos pelos, los cuales mo son comprimidos pero forman un

— 374 —

ángulo (oblícuo)..La venación alar es como el D. punctatus. No hay espina -en

la parte apical de las tibias” (Traducido del alemán).

Promachus spissibarbis (Macquart)

Trupanea spissibarbis Macquart 1846, p. 80, Chile.

Promachus spissibarbis (Macquart). Stuardo, 1946, p. 84; Hull, 1962, p. 462.

TYPO. G, Chile, en la colección de Maximiliano Marchese de Spinola,

Castello di Tarrarolo, Novi Ligure, Italia (no visto).

DESCRIPCION ORIGINAL DE MACQUART: “Trupanea spissibarbis, Nob.

Thorace Griseo tomentoso vittisque fuscis. Abdomine nigro; lateribus testaceis,

Moystace flavo. Pedibus nigris, supra testaceis. Long. 11 l. [*] Z. Palpos negros, con

pelos negros. Barba, cara y mystax amarillos, este último disperso, extendiéndose

hasta las antenas. Frente negra, con micropubescencia amarillenta. Antenas: los

primeros dos segmentos negros; el tercero falta. Tórax con micropubescencia gris

roj'za y bandas negras; entremedio hay líneas longitudinales amarillentas poco

definidas. Abdomen negro, café oscuro en los costados; borde posterior de los

segmentos blanco, interrumpido en el centro. Patas con cerdas negras y cortos

pelos blanquecinos, fémures posteriores ventralmente café oscuros. Alas bastante

claras; venación alar normal, como en T. flavifasciata. La primera vena oblicua.

De Chile. M. le marquis Spinola Collection” (Traducido del francés). [*] 1 =

línea.

La venación alar de T. flavifasciata es mostrada por Macquart, 1838, Pl. 9,

Fig. 1; una ampliación de esta ala se muestra en la Fig. 250.

Saropogon carbonarius Philippi)

Dasypogon carbonarius Philippi, 1865, p. 687, Colchagua, Valdivia; Bigot, 1878,

p. 221; Stuardo, 1946, p. 82.

Saropogon carbonarius (Philippi). Hull, 1962, p. 278.

TYRO. Perdido:

DESCRIPCION ORIGINAL DE PHILIPPI: “D. Carbonarius Ph. D. corpore,

capite, antennis pedibusque atris; facie albomicante; vittis duabus thoracis angustis

albidis; alis infumatis. Long. corp. 5 lin. extens. alar 8 lin. Habitat in prov. Col-

chagua et Valdivia. Los largos pelos que cubren uniformemente la cabeza son

negros. El stylo de las antenas está bien definido, es bastante largo y de dos

segmentos. El tórax tiene largos pelos negros ligeramente reclinados en el dorso.

Las cerdas escutelares son densas, largas y curvadas dorsalmente. El abdómen

— 375 —

es desnudo en el dorso; muy brillante; pero la parte ventral posee largos pelos

negros que forman mechones dirigidos dorsalmente; solamente los últimos seg-

mentos, en su parte ventral, tienen pelos negros más cortos. Las patas están cu-

biertas con largos pelos amarillentos y las tibias frontales no tienen espina apical.

Las alas tienen una larga y angosta celda discal pentagonal, la cuarta celda pos-

terior está muy abierta y la celda anal está sólo ligeramente abierta. Un especimen

de Prov. Colchagua tiene los costados del tórax y el vientre gris. Sin espina

terminal en las tibias frontales” (Traducido del alemán).

De acuerdo con la descripción original, esta especie no tiene espina en las

tibias anteriores, por lo tanto no puede ser incluída en Araiopogon, donde otras

especies chilenas, descritas originalmente o asignadas al género Saropogon, han

sido ubicadas en este trabajo.

Scylaticus nitidigaster (Macquart)

Dasypogon nitidigaster Macquart, 1850, p. 69, Chile; Blanchard ¿n Gay, 1852,

7: 367, Coquimbo.

Scylat:cus nitidigaster (Macquart). Stuardo, 1946, p. 81; Hull, 1962 p. 145,Neo-

tropical.

TYPO. Perdido.

DESCRIPCION ORIGINAL DE MACQUART: “Niger. Antennis pedibusque

rufis. Mystace flavo. Long. 7 l. Z. Palpos y pelos negros. Barba blanquecina. Cara

y frente negra, con un fino vello blanquecino; mystax amarillo, cubriendo la mitad

de la cara. Antenas de un amarillo vivo. Tórax negro, con pelos amarillos; mancha

escapular amarillo pálido. Abdómen negro brillante, con reflejos verdosos; arma-

dura copulatriz con pelos amarillos. Patas amarillas; coxas y base de los fémures

negros; estos últimos con pintas blancas; tibias y tarsos punteadas de amarillo;

con espolón agudo en las tibias anteriores. Alas de un gris rojizo, con el borde

exterior amarillento; cuarta celda posterior cerrada; venas transversales situadas

en los dos tercios de la discoidal. De Chile. M. d'Orbigny. Museo”.

Stichopogon ocrealis (Rrondani)

Philammostus ocrealis Rondani, 1863, p. 45.

Stichopogon ocrealis (Rondani). Stuardo, 1946, p. 81; Hull, 1962, p. 106.

TYPO. Localidad desconocida.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DE RONDANTI: “sp. n. Philammosius ocrealis.

Long. Mill. 7. (Mas.). Negro, con seda oscura en la cabeza y en el tórax. Mystax

— 376 —

café rojizo claro, — barba blanco puro — antena con el primer segmento cilíndrico,

el segundo más corto, sub-oval; el ltimo sub-lanceolado. Halteres amarillos — Alas

ligeramente grisáceas, ápice de la octava vena doblado, haciendo contacto con la

novena vena, luciendo como una vena transversa. Costados del primer segmento

abdominal con cerdas blancas, el resto de los segmentos con una mancha la-

teral blanca, y en los dos últimos con una bien definida línea blanquecina en

los márgenes, genitalia con forceps fuertes. Patas con pelos y cerdas blancas,

las cuatro tibias anteriores rojizas cerca de la base en su parte externa: fémures,

principalmente los témures posteriores, con pelos blancos en la parte ventral;

tibias posteriores con cerdas cortas y gruesas, blancas, en la parte posterior; tarsos

con algunas cerdas negras entremezcladas. Chiliae — Philippi” (Traducido del

latín).

— 317 —

sap

Pronomopsis rubripes, genitalia Y en vista dorsal.

E ” >=, funda del pene en vista lateral.

Atractocoma nivosa, genitalia Y en vista lateral.

A. ” , genitalia Y en vista lateral.

A. sala

Chilesus geminatus, cabeza en vista lateral),

Ch. a . alle.

cerco

gonopodo

hypandrium

membrana

funda del pene

octavo tergite

placa subanal

— 378 —

y Y) % 8, AS AS

ERRE ACER >

ION SS

1 MN Ñ

ET 224

Chilesus gemimatus, genitalia Y en vista lateral.

Ch. Y , Ovipositor en vista lateral.

Cratolestes chiliensis, genitalia J en vista lateral.

C. ” ——, funda del pene en vista lateral.

Cc. + , ala.

C. ” —, Ovipositor (después de aclarado) en vista dorsal; pe-

los omitidos.

C. ” —, Ovipositor (después de aclarado) en vista ventral; pe-

los omitidos.

cerco

epandrium

gonopodo

hypandrium

octavo sternite

octavo tergite

noveno tergite

— 380 —

932. Cratolestes wirthi, cabeza en vista lateral.

233. C. ” —, funda del pene en vista lateral.

a O ” , genitalia J en vista lateral.

IN EN ” —, ovipositor (después de aclarado), en vista dorsal; pelos

omitidos.

236. Cratopoda emarginata, genitalia Y en vista lateral.

23, E. e , genitalia Y en vista ventral.

239. E S , funda del pene en vista lateral.

€ cerco

dist dististylus

ep epandr:um

gp gonopodo

hyp hypandrium

tg, séptimo tergite

tg, octavo tergite

ES noveno tergite

— 382 —

4 RN

de IN

RD | JA

CNN

% IN Qe

NANA

di, NW

2114)

239. Cratopoda emarginata, ápice de la funda del pene en vista dorsal.

240... C. A , Ovipositor en vista lateral.

26. 3 , Ovipositor (después de aclarado), en vista ventral;

pelos omitidos.

242. Cratopoda helix, gen'talia Y en vista lateral.

243. C. ” , ápice de la funda del pene en vista dorsal.

244. C. ” , funda del pene en vista lateral.

DA E ” —, Ovipositor en vista lateral.

246. C. ” , genitalia Y en vista ventral.

€ cerco

dist dististylus

gp gonopodo

hyp hypandrium

tg, séptimo tergite

tg, noveno tergite

stn octavo sternite

— 384 —

dist” AN:

ENS

250.

109)

| No)

Cratopoda helix, ala.

Mirolestes fascialis, antena.

Efferia patagonenstis, genitalia Y en vista lateral.

Trupanea flavifasciata Macquart (ex Macquart), ala.

Efferia patagonensis, cabeza en vista lateral.

Eccritosita rubriventris, pupario abierto, en vista lateral.

Cerco

epandrium

gonopodo

séptimo tergite

— 386 —

260.

Sit

Eremomyia

¡ER

BE.

”

cerco

epandrium

gonopodo

placa subanal

stylus

tibia mediana

séptimo tergite

octavo tergite

noveno tergite

octavo sternite

tumbrensis, cabeza en vista lateral.

, genitalia Y en vista dorsal.

, funda del pene en vista lateral.

, Ovipositor en vista lateral.

tibia mediana.

ala

, ápice del ovipositor en vista dorsal.

, genitalia Y en vista lateral.

— 388 —

261. Lochmorhynchus borrori, genitalia Y en vista lateral.

262. “Es puntarenensis, cabeza en vista lateral.

2632. EE: griseus, genitalia Jen vista lateral.

263b.1 £: puntarenensis, genitalia Y en vista lateral.

264. E. borrori, funda del pene en vista lateral.

AA griseus, ovipositor en vista lateral.

1 , funda del pene en vista lateral.

C cercus

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

sap placa subanal

stna octavo sternite

tBa octavo tergite

tg 1oveno tergite

— 390 —

l8s

Lochmorhynchus griseus, 3 ala.

IL;

borrori, ovipositor en vista dorsal.

griseus, GJ ala.

borrori, ápice del ovipositor en vista lateral.

puntarenensis, ápice del ovipositor en vista dorsal.

, ápice del ovipositor en vista lateral.

griseus, ovipositor en vista dorsal.

Lochyrus balmacedensis, genitalia Y en vista lateral

cerco

epandrium

gonopodo

hypandrium

séptimo tergite

octavo tergite

noveno tergite

— 392 —

Lochyrus balmacedensis, genitalia Y (luego de aclarada), en vista dorsal;

CYrAssus,

pelos omitidos.

, ápice de la funda del pene en vista dorsal.

, funda del pene en vista lateral.

genitalia Y en vista lateral.

balmacedensis, genitalia Y (luego de aclarada), en vista ventral,

CYassus,

”

cerco

epandrium

gonopodo

hypandrium

pelos omitidos.

genitalia Z (luego de aclarada), en vista dorsal; pelos

omitidos.

funda del pene en vista lateral.

funda del pene en vista dorsal.

octavo sternite

octavo tergite

— 394 —

283. Lochyrus crassus, ovipositor en vista lateral.

40 0 DA ” —, hypandrium en vista ventral.

iD frezieri, funda del pene en vista lateral.

200. LL. crassus, ala.

ASE ES freziert, cabeza en vista lateral.

2887 Es ” —, genitalia 7 (luego de aclarada), en vista dorsal; pelos

omitidos.

AE ” —, ápice de la funda del pene en vista dorsal.

ZION TES ” —, genitalia Y en vista lateral.

C cerco

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

stn, octavo sternite

tg. octavo tergite

tg, noveno tergite

— 396 —

dist

hyp

18s

Lycomyia germaini, genitalia Y en vista lateral.

cabeza en vista lateral.

funda del pene en vista lateral.

genitalia del macho en vista dorsal; pelos omitidos.

ovipositor en vista lateral.

Mallophora freycineti, cabeza en vista lateral.

Lycomyia germaini, ala.

cerco

epandrium

dististylus

gonopodo

hypandrium

octavo tergite

noveno tergite

— 398 —

293

Y) si

is y

277

Mallophora freycineti, ala.

M. pe

M. E

, uñas.

, área basalar.

Megametopon immaisericorde, genitalia Y en vista ventral; pelos omitidos.

sclerite basalar

cercus

uña

dististylus

epandrium

mesepimeron

gonopodo

halter

hypopleuron

hypandrium

mesop!euron

pteropleuron

pu'villus

”

, genitalia Y en vista lateral.

, genitalia y en vista dorsal; pelos omitidos.

”

, funda del pene en vista lateral.

proceso pleural del ala

scler'te subalar

mesoscutellum (scutellum)

costados del postmesonotum

spiráculo mesotorácico

mesosternop.euron

vena transversa sectorial

octavo terg te

sutura transversa

ala

400

307.

308.

310.

bast

dist

hyp

stn,

18;

Megametopon occidentale, ala.

basistylus

cerco

dististylus

epandrium

gonopodo

hypandrium

séptimo sternite

octavo sternite

séptimo tergite

octavo tergite

noveno tergite

, Cabeza en vista lateral.

, genitalias Y y Q en cópula, pelos omitidos

, Ovipositor en vista lateral

, Ovipositor en vista ventral.

, genitalia Z en vista lateral.

, funda del pene en vista lateral.

— 402 —

05mm

? AN

AAN

AENA

ec Yy Tm 306 LAN

307 jo

= (9,

Imm

Sstng

Aa tg

309 ,

312. Myaptex hermanna, genitalia g (después de aclarada), en vista dorsal;

pelos omitidos.

313, M. Ñ , genitalia Y en vista lateral.

314. M. $ , $, sternite 7 en vista ventral.

SUS Ad , funda del pene en vista lateral.

316. M. E , Ovipositor en vista lateral.

o E: brachypterus, cabeza en vista lateral.

318. M. É , genitalia Y en vista lateral.

C cerco

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

psh funda del pene

sap placa subanal

tg, séptimo tergite

tBs octavo tergite

ts noveno tergite

— 404 —

319:

320.

az:

322.

az0:

324.

Myaptex

brachyptera, $, sternite 7 en vista ventral.

funda del pene en vista lateral.

, genitalia Y (después de aclarada), en vista dorsal;

pelos omitidos.

, Ovipositor en vista lateral.

vexillaria, antena.

Q, sternite 7 en vista ventral

, genitalia Y en vista lateral.

, funda del pene en vista lateral.

cerco

epandrium

hypandrium

séptimo sternite

octavo tergite

noveno tergite

, Ovipositor en vista lateral.

— 406 —

328. Myaptex vexillaria, ala.

329 M. virilis, genitalia Z en vista lateral.

330. M. ” —, funda del pene en vista lateral.

SOM: antenas

332. M. ” —, ovipositor en vista lateral.

OM O stermites/ “en vista ventral;

334. Menexenus concepcionensis, ala.

335. M. + , cabeza en vista lateral.

C cerco

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

stn, séptimo sternite

stn, octavo sternite

tBs octavo tergite

tg noveno tergite

— 408 —

336.

337.

338.

399,

34 Z

Menexenus concepcionensis, Ovipositor en vista lateral.

funda del pene en vista lateral.

, ápice de la funda del pene en vista dorsal.

, genitalia Y en vista lateral.

, genitalia Y (después de aclarada) en vista

dorsal; pelos omitidos.

veredus, genitalia Gg (después de aclarada) en vista dorsal;

pelos omitidos.

, genitalia Y en vista lateral.

cerco

epandrium

gonopodo

hypandrium

placa subanal

octavo sternite

octavo tergite

noveno tergite

— 410 —

343. Menexenus veredus, ápice de la funda del pene en vista dorsal.

344. M. ” ——, funda del pene en vista lateral.

345. Nesiotes Chiloensis, unión del tórax y el abdómen en vista dorsal.

SAO. IV je , genitalia Y en vista lateral.

NE e , genitalia ¿G (después de aclarada) en vista ventral;

pelos omitidos.

348. Nesiotes chiloensis, cabeza en vista lateral.

49. N: a , ala.

bas basistylus

dist dististylus

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

n, mesonotum

pc callo posterior

psh funda del pene

R, cuarta vena radial

sel, mesoscutellum (scutellum)

sipn, costados del postmesonotum

tg, primer tergite

tg, segundo tergite

350. Nesiotes chiloensis, genitalia Z (después de aclarada) en vista dorsal; pelos

omitidos.

SM NE + , Ovipositor en vista lateral.

352. N. $ , Ovipos:tor en vista ventral.

353. Nomomyia tvetteae, genitalia Y en vista lateral.

394. N. 35 funda del penerenvista lateral

UV e cabeza en vista lateral:

356. N. ” —, Ovipositor en vista dorsal.

0d. IN: ” —, oOvipositor en vista lateral.

C cerco

dist dististylus

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandr:um

stn, séptimo sternite

tg, octavo tergite

tg, noveno tergite

— 414 —

358. Nomomyia murina, genitalia Y en vista lateral.

359. N. ” —, ovipositor en vista lateral.

360. N. ” —, funda del pene en vista lateral.

A e alas

362. N. A Omar

363. Philonerax muc:dus, genitalia Y en vista lateral.

364. Ph. ” —, funda del pene en vista lateral.

Sd O "o, bla frontal

ep epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

stN, octavo sternite

tb, tibia frontal

— 416 —

0.5mm

na ale 362

0,5 mm

109)

Philonerax chilechicoensis, cabeza en vista lateral.

Ph.

Eccritosia

epandrium

hypandrium

octavo sternite

octavo tergite

noveno tergite

, genitalia Y en vista lateral.

, funda del pene en vista lateral.

, Ovipositor en vista dorsal.

, ala.

rubriventris, genitalia g en vista lateral.

, cabeza en vista lateral.

- Ai TA FDA Me

— —

—

ASAS

1 ra OS N Ñ N

IN, e JA NENA

ZW) E / ¡ IN N

373. Eccritosia rubriventris, ovipositor en vista dorsal.

314.318: e , gonopodo en vista ventral.

DE: , , genitalia Y en vista dorsal; pelos omitidos.

3/67 LD, A , funda del pene en vista lateral.

E O >: , ala:

378. Rhadinosoma calderense, genitalia Y en vista lateral.

ag UR S , cabeza en vista lateral.

380. R. ES , ala.

AE de , genitalia Y (después de aclarada) en vista dorsal;

pelos omitidos.

bas basistylus

C cerco

dist dististylus

ep | epandrium

gp gonopodo

hyp hypandrium

psh funda del pene

sap placa subanal

stn, octavo sternite

tg. octavo tergite

tg, noveno tergite

— 420 —

383.

384.

385.

386.

387.

388.

bas

Rhadinosoma calderense, genitalia y (después de aclarada) en vista ven-

tral; pelos omitidos.

li S , Ovipositor en vista lateral.

R. S , funda del pene en vista lateral.

Stizolestes aureomaculatus, genitalia Y en vista lateral.

S, ' , funda del pene en vista lateral.

S. ertirichus, genitalia Z en vista lateral.

S. ” ——, genitalia Y (después de aclarada) en vista dorsal;

pelos omitidos.

basistylus

cercus

dististylus

epandrium

gonopodo

hypandrium

funda del pene

placa subanal

octavo tergite

dist

psh

Strizolestes atribarbis, genitalia Y en vista lateral.

3: modellus, ovipositor en vista lateral.

S. gayt, genitalia Y en vista lateral.

S. nigriventris, genitalia Y en vista dorsal.

S. may, genitalia Y en vista lateral.

Si gayi, ala.

basistylus

cerco

dististylus

-epandrium

gonopodo

funda del pene

placa subanal

octavo tergite

noveno tergite

— 424 —

395. Stizolestes nigriventris, cabeza en vista lateral.

3996.. 3: =i , funda del pene en vista lateral.

37 8. 43 , genitalia Y en vista dorsal.

398. 5. Sl , genitalia Y en vista lateral.

O: pamponeroides, ovipositor en vista lateral.

400. Zoticus toconaoensis, cabeza en vista lateral.

0 Z: % , Ovipositor en vista lateral.

C cercus

ep epandrium

gp gonopodo

psh funda del pene

te, sexto tergite

tg. octavo tergite

tg, noveno tergite

— 426 —

402. Zoticus toconavensis, ala.

403. Z. E , hypandrium y gonopodos en vista ventral.

404. Z. de , genitalia Y en vista lateral.

405. Z. É , funda del pene en vista lateral.

406. Atomosta modesta, ala (ex Philippi).

407. Leptochelina jaujensis, genitalia Y en vista lateral.

C cerco

Cu vena cubital

D celda discal

ep epandrium

gp sonopodo

hyp hypandrium

M vena medial

m vena transversa medial

E celda posterior

R vena radial

sap placa subanal

te. octavo tergite

— 428 —

408.

409.

410.

411.

412.

413.

Menexenus concepcionensis

Lycomyia germainii

Eccritosia rubriventris

Pronomopsis chalybea;

Prolepsis cuadrinotata;

Mallophora freycineti;

Philonerax mucidus

Pronomopsis rubripes; Pritchardia hirtipes

Efferia patagonensis

— 430 —

ybed0O au

> mucidus Y E

pcionensis Y

)

P chal

mece

e90

o| un

539

AS al

ERE

Q QA Y

cmetl

frey

E. patagonensis Y

413

— 431 —

4214

414,

Provincias de Chile;

Tarapaca

Antofagasta

Atacama

Coquimbo

Aconcagua

Valparaiso

Santiago

O'Higgins

Colchagua

Curico

Talca

Maule

Linares

Ñuble

Concepción

Arauco

Malleco

Bio Bio

Cautín

Valdivia

Osorno

Llanquihue

Chiloe

Aysén

Magallanes

poc

ARGENTINA

72 68

— 432 —

415. Lochyrus crassus; 416. Lochyrus balmacedensi:

7 68 72 68 72 68

417. Hypenetes punctipennis; 418. Hypenetes magellanicus; 419. Hypenetes

valentinei; 420. Hypenetes davidsont,

— 433 —

7 ES

72 63 72

Un .

59 »

SITAS

iZ 68 72 68

421. Cratolestes wirthi; 422. Megametopon immisericorde; 4923.

loensis; 424. Menexenus veredus; 425. Dasycyrton minusculus;

chelina jaujensis; 427. Scylaticus venustus; 428. Hypenetes critesi.

Nesiotes chi-

426. Lepto-

429. Scylaticus cuneigaster; 430. Megametopon occidentale; 431. Lochmorhyn-

chus puntarenensis; 432. Araiopogon fraternus; 433. Myaptex hermanni.

— 435—

154, Myaptex brachyptera; 435. Oberon fulvipes; 436. Alyssomyia bulbosa;

437. Lamprozona chilensis.

— 436 —

438. Araiopogon cyanogaster; 439. Cratolestes chiliensis; 440. Lamprozonma

auricincia.

— 437 —

441. Deromyia fuscipennis; 442. Aratopogon choapensis; 443. Theromyia

pegnaz;, 444. Stizolestes mayi; 445. Atomosia modesta; 446. Deromyia ni-

griventris.

447. Dasycyrton gibbosus; 448. Creolestes rubricornis; 449. Myaptex virilis;

450. Scylaticus lugens; 451. Scylaticus rufipes; 452. Lochyrus balmacedensis.

— 439 —

453. Araiopogon gayi; 454. Myaptex vexillaria; 455. Cratopoda emarginata;

456. Momomyia murina.

— 440 —

7 68 72 68 72 68

457. Graptostylus dolosus; 458. Stizolestes eritrichus; 459. Stizolestes atribarbis;

460. Oberon fulvicornis; 461. Stizolestes aureomaculatus; 462. Theromyia

murina.

— 441 —

463. Dasypecus heteroneurus; 464. Pritchardia curicoensis; 465, Scylaticus

chilensis; 466. Andrenosoma rufiventris.

449

72 68 72 68 72 68

467. Obelophorus terebratus; 468. Hypenetes fucosus; 469. Rhadinosoma

calderense; 470. Creolestes keiseri; 471. Lochmorhynchus griseus.

— 443 —

72 68 72 68 72 68

Pritchardia puella; 473. Alyssomyia pampina; 474. Hexameritia micans;

Nomomyia ¡wetteae; 476. Obelophorus landbecki.

— 444 —

472.

175.

477. Dasycyrton coquimbensis; 478. Dasycyrton arrayanensis; 479. Eremomyia

tumbrensis; 480. Dasycyrton sucinopedis; 481. Pritchardia tertialis; 482. Alyssomyia

brevicornis.

— 445 —

183. Cratopoda helix; 484. Hypenetes digitatus; 485. Lochyrus frezier!.

— 446 —

486. Pronomogpsis talabrensis; 487. Dasycyrton tener; 488. Atractocoma nivosa;

489. Zoticos toconaoensis; 490. Dasycyrton lanosus; 491. Dasycyrton papavero:;

492. Dasycyrton gibbosus; 493. Hypenetes schineri; 494. Holopogon notocine-

reatus; 495. Chilesus geminatus.

— 47 —

196. Lochmorhynchus borrori; 497. Creolestes nigribarbis; 498. Creolestes

rufescens; 499, Stizolestes modellus; 500. Philonerax chilechicoensis.

— 448 —

501. Stizolestes gayi; 502. Stizolestes pamponeroides; 503. Stizolestes nigriventris;

504. Hypenetes asiliformis.

— 449 —

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INDICE DE GENEROS Y TAXA SUPERIORES

Alyssomyia Hull, 44, 45, 55, 56, 57.

Andrenosoma Rondani, 19, 22, 32, 42, 44, 47, 56, 238, 239, 373.

Andrenosomini, 44.

Aphamartania Schiner, 183.

Aralopogon Carrera, 32, 44, 45, 50, 65, 170, 376.

Asilinae, 19, 22, 33, 43, 44, 47, 259.

Asilini, 44.

Asilus Linne, 349, 350.

Atomosia Macquart, 373.

Atomosini, 44.

Atractia Macquart, 43.

tracto coma, mu. gen, 20, 44, 47, 53, 259, 260, 369.

Automolina Hermann, 242.

Bathypogon Loew, 78, 144.

Chilesus Bromley, 44, 47, 56, 261, 262.

Clavator Philippi, 57, 124.

Cocodaemon Schiner, 165.

Cocodaemonides Strand, 165.

Cormansis Walker, 243, 245.

Cratolestes Hull, 44, 52, 56, 264.

Cratopoda Hull, 44, 47, 53, 270, 274, 296.

Creolestes Hull, 20, 44, 45, 47, 55, 78, 79, 82, 125, 144.

Cylindrophora Philippi, 182.

Dasycyrton Philippi, 33, 44, 45, 55, 91, 92.

Dasypecus Philippi, 29, 36, 44, 45, 50, 109, 110.

Dasypogon Me'gen, 109, 110.

Dasypogoninae, 33, 43, 44, 45, 56.

Dasypogonini, 44.

-. —461 —

Deromyia Philippi, 19, 29, 32, 44, 45, 50, 56, 112, 115, 151.

Dicranus Loew, 144.

Dioctrini, 44.

Diogmites Loew, 113,

Dolichogaster Macquart, 63.

Dysmachus Loew, 356

Eccritosia Schiner, 28, 33, 44, 47, 51, 278.

EfternarCoquiliet; 42 EE El OZ de

Elaetoma Costa, 238.

Erax Scopoli, 281.

Eremomyíia, n. gen., 44, 47, 51, 284, 285,

Euthrix Philippi, 170.

Eutrichodes Hermann, 121.

Glaphyropyga Schiner, 43.

Graptostylus Hull, 19, 44, 45, 55, 118.

Halictus sp., 71, 315.

Heligmoneura Bigot, 318.

Hexamenitia Speiser, 19)22,429, 39, Pido, 004 AO) 2 le

Hirmoneura Meigen, 278.

Holcocephala Jaennicke, 43.

Ho!opogon Loew, 91, 92, 110.

Elypenetes Loew, 42, 44, 46, 55, 124, 125, 141.

Lamprozona Loew, 44, 47, 56, 242, 243.

Laphria Meigen, 238, 373.

Laphriinae, 43, 44, 47, 238.

Laphystini, 44.

Leinendera Carrera, 43.

Leptochelina, n. gen., 33, 44, 46, 55, 143, 144.

Leptogaster Meigen, 43.

Leptogasterinae, 43, 44,

Lochites Schiner, 116, 366.

Lochitomyia Bréthes, 116.

Lochmorhynchus Engel, 36, 44, 48, 52, 285, 287, 288, 336, 337.

Lonchodogonus Hull, 342,

Lochyrus n. gen., 44, 48, 53, 296, 297,

Lynchia Wil'iston, 182.

Lycomyia Bigot, 306.

Lycomyia Bigot, 22, 43, 44, 48, 56, 259, 263, 306, 307.

Mallophora Macquart, 19, 28, 29, 33, 36, 41, 44, 48, DIOS

Megametopon n. gen., 44, 48, 53, 312, 313, 369.

Megapodinae, 33, 43, 44, 47, 252.

Menexenus n. gen., 44, 48, 52, 317, 318.

3462

Mirolestes Curran, 112, 113.

iiaptex Elull, 39, 44, 48, 53, 323, 324, 334.

Myiothera Williston, 182.

Neolaparus Williston, 112, 113.

Nesiotes n. gen., 29, 44, 48, 53, 313, 333, 334.

Nerax Hull, 281.

Nomomyia n. gen., 36, 44, 48, 54, 336, 337.

Nusa Walker, 239.

Obelophorus Schiner, 22, 29, 33, 44, 46, 54, 146, 147.

Oberon Carrera £« Papavero, 19, 28, 44, 46, 50, 141, 151.

Pilica Curran, 239.

Phellini, 44.

Philammosius Rondani, 376.

Philonerax Bromley, 36, 44, 48, 51, 341, 342.

Pritchardia n. gen., 244, 46, 55, 156.

Proctacanthus Macquart, 279.

Prolepsis Walker, 33, 36, 44, 46, 54, 165.

Promachus Loew, 49, 371, 375.

Pronomopsis Hermann, 21, 29, 32, 38, 44, 47, 50, 252, 253.

Pogonosoma Rondani, 239.

Rhadinosoma n. gen., 44, 48, 54, 346, 347.

Saropogon Loew, 29, 42, 44, 46, 50, 66, 168, 170.

Sarapogon Williston, 168, 376.

Beylaticús. Loew, 29, 42, 44, 46, 55, 170, 171.

Senobasis Macquart, 112, 113.

Stichopogon, 49, 371, 376.

Stizolestes Hull, 22, 28, 44, 48, 53, 278, 319, 350, 366.

Stenopogon Loew, 366.

Stenopogonini, 44.

Strobilopygius Hull, 156.

Theromyia Williston, 33, 38, 44, 47, 50, 182, 183.

Tillobroma Hull, 125.

Triclis Loew, 122, 123.

Trupanea Macquart,

Xenomyzini, 43.

Zoticus n. gen., 44, 49, 54, 368, 369,

— 463 —

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INDICE DE NOMBRES ESPECIFICOS

aestuans Linne, Asilus,

acanthocnemis Ph. Dasypogon, 187.

albescens Schiner, Erax, 265, 268, 291.

albescens (Schiner), Lochmorhynchus, 265.

albescens (Schiner), Nerax, 265.

annulifer Ph., Asilus, 306.

anthracina Ph., Laphria, 242.

apiformis, Dasypogon, 187.

arrayanensis n. sp., Dasycyrton, 45, 92, 93, 95; Figs. 70, 83, 478.

articulata Philippi, Hirmoneura, 278.

asiliformis (Wulp), Hypenetes, 46, 124, 125, 127; Figs. 87-91, 504.

atra Linne, Asilus, 238.

atrata Philippi, Lamprozona, 243.

atratus Philippi, Dasypogon, 243, 245,

atribarbis n. sp., Stizolestes, 48, 351, 352; Figs. 389, 459.

aureomaculatus (Bromley), Stizolestes, 48, 351, 353, 360, 368, 372; Figs. 385,

386, 461.

auricincta Loew, Lamprozona, 47, 213, 374; Figs. 203-205, 207, 208, 440.

balmacedens's n. sp. Lochyrus, 48, 297, 299; Figs. 274-277, 279, 416, 452.

barbatus Fabricius, Asilus, 278.

bomboides Wiedemann, Asilus, 310.

borrori n. sp., Lochmorhynchus, 48, 288, 291; Figs. 261, 264, 268, 270, 496.

brachypterus Philippi, Asilus, 324.

brachyptera (Philippi), Myaptex, 17, 48, 324, 327, 328, 329; Figs. 317-322, 434.

brevicornis (Philippi), Alyssomyia, 17, 45, 57, 58, 59, 61, 63, 65; Figs. 42-44, 482.

brevicornis Philippi), Clavator, 56, 57, 59.

brevicornis (Philippi), Hypenetes, 59.

brevicornis (Philippi), Pritchardia, 59.

— 465 —

bulbosa n. sp. Alyssomyia, 45, 58, 61, 62, 65; Figs. 45-48, 436.

calderense n. sp., Rhadinosoma, 48, 346, 347, 348; Figs. 378-384, 469.

calogastra (Philippi) Andrenosoma, 239, 242.

calogastra Philippi, Laphria, 239.

calogastra (Philippi), Nusa, 239.

calopyga (Schiner), Aphamartania, 183, 184.

calopyga Schiner, Cylindrophora, 184.

calopyga (Schíiner), Theromyia, 184.

candidus Coquillet, Efferia, 281.

carbonarius Philippi, Dasypogon, 371, 375.

castaneipes Bigot, Lamprozona, 243.

chalybea Hermann, Pronomopsis, 4202 273 Pia dale

chalybeiventris Loew, Dasypogon, 74, 76, 375.

chalybeiventris (Loew), Saropogon,

chilensis Brethes, Atomosia, 243.

chilensis Hermann, Automolina, 246.

chilensis Macquart, Dasypogon, 172, 174.

chilensis (Brethes), Lamprozona, 243.

chilensis (Hermann), Lamprozona, 47, 243, 246, 374; Figs. 206, 209-212, 214, 437.

chilensis (Macquart), Scylaticus, 46, 171, 172; Figs. 148, 152, 154, 155, 465

chiliensis (Macquart), Cratolestes, 34, 47, 259, 265, 268; Figs. 13, 227-231, 439,

chiliensis Macquart, Erax, 264, 265.

chiliensis (Macquart), Nerax, 265.

chilechicoensis n. sp., Philonerax, 48, 342, 311, 346; Figs. 366-370, 500.

chiloensis n. sp., Nesiotes, 48, 333, 334, 335; Figs. 345-352, 423.

choapensis n. sp., Araiopogon, 45, 66, 67,68; Fig. 442.

cinereus Philippi, Erax, 291.

claripennis Schiner, Bathypogon, 86, 87, 88.

concepcionensis Bromley, Asilus, 317, 319.

concepcionensis (Bromley), Heligmoneura, 319.

concepcionensis (Brom!ey), Menexenus, 48, 318, 319, 321; Figs. 334-340, 408.

coquimbensis n. sp. Dasycyrton, 45, 93, 95, 96, 101; Figs. 78, 477.

crassus Bromley, Asilus, 296, 299.

crassus (Bromley), Lochyrus, 48, 297, 299, 303; Figs. 278, 280-284, 286, 415.

cribatus Hull, Lonchodogonus, 344.

critesi n. sp., Hypenetes, 46, 126, 128, 129, 135; Figs. 92, 93, 95, 97, 428.

cuadrinotata (Bigot), Prolepsis, 166.

cuneigaster n. sp., Scylaticus, 46, 171, 174, 175; Figs. 150, 153, 156, 429.

curicoensis n. sp., Pritchardia, 46, 156, 157, 158; Hita 464:

cyanescens (Bigot), Atomosia, 243.

cyanescens Bigot, Cormansis, 243, 245.

cyanescens (Bigot), Lamprozona, 243.

— 466 —

cyanogaster (Loew), Araiopogon, 45, 66, 67, 68; Figs. 168, 170, 171, 438,

cyanogaster Loew, Dasypogon (Saropogon), 68.

davidsoni n. sp. Hypenetes, 46, 125, 126, 130, 132, 134; Figs. 94, 96,98, 99, 420.

digitatus n. sp., Hypenetes, 46, 125, 126, 132, 133, 134; Figs. 100, 101, 103-105, 484.

dolosus Hull, Graptostylus, 45, 118, 119; Figs. 65, 67-69, 71, 74, 457.

emarginata n. sp., Cratopoda, 47, 271, 273; Figs. 236-241, 455.

eriopettis Ph., Asilus, 273.

erittrichus (Philippi), Stizolestes, 17, 49, 351, 355; Flgs. 387, 388, 458.

fascialis Curran, Mirolestes, Fig. 248.

fascipennis (Blanchard), Deromyia, 113.

fascipennis (Blanchard), Leptogaster, 113.

flava n. n., Deromyia, 155.

flavicornis, 141.

flavifasciata Macquart, Trupanea, 375; Fig. 250.

fraternus (Bigot), Araiopogon, 17, 45, 66, 72; Figs. 166, 167, 432.

fraternus Bigot, Saropogon, 72.

fraternum Bigot, Saropogon, 72.

freycineti Macquart, Mallophora, 42, 48, 310; Figs. 296-500, 413.

frezieri n. sp. Lochyrus, 48, 297, 303; Figs. 287-290, 485.

fiscipennis Blanchard, Deromyia, 17, 33, 45, 113, 155; F!gs. 173, 174-178, 441.

fucosus n. sp., Hypenetes, 46, 126, 134, 135, 136; Figs. 102, 104, 106, 107, 109, 468.

fumiflama Walker, Prolepsis, 165.

fulvicornis Hermann, Hypenetes, 139.

fulvicornis Macquart, 125, 141.

fulvicornis (Macquart), Araiopogon, 152.

fulvicornis Macquart, Dasypogon, 140, 141, 152, 153.

fulvicornis (Macquart), Oberon, 46, 151, 152; Figs. 133, 134, 138, 460.

fulvicornis (Macquart), Pritchardia, 152.

fulvicornis (Macquart), Scylaticus, 152.

fulvicornis (Macquart), Triciis, 152.

fulvipes Philippi, Deromyia, 154.

fulvipes (Philippi) Oberon, 17, 33, 46, 151, 151, 155; Figs. 135-141, 435.

gayi Macquart), Araiopogon, 36, 45, 66, 74; Figs. 165, 169, 172, 453.

gayi (Macquart), Asilus, 270, 356.

gayi, Bradynobaenus, 187.

gayi (Macquart), Cratopoda, 274, 278.

gayi (Macquart), Dasypogon, 65, 74.

gayi (Macquart), Dysmachus, 356.

gayi (Macquart), Saropogon, 74.

gayi (Macquart), Stizolestes, 49, 350, 356; Figs. 391, 394, 501.

geminatus Bromley, Chilesus, 47, 261, 262; Figs. 223-226, 495.

germaini Bigot, Lycomyia, 307.

— 461 —

germainii Bigot, Lycomya, 48, 307.

germainii Bigot, Lycomyia, 17, 306, 307; Figs. 291-295, 297, 409,

gibbosus Philippi, Dasycyrton, 17, 45, 91, 92, 97, 98; Figs. 82, 492, 447.

eracilis Philippi, Deromyia, 112, 113, 114.

eriseus Guerin, Asilus, 291.

griseus (Guerin), -Erax, 291, 294.

Griseus (Guerin), Lochmorhynchus, 48, 288, 291, 294; Figs. 263a, 265-267, 269,

ZO EE

helix Bromley, Asilus, 270, 273.

helix (Bromley), Cratopoda, 24, 26, 30, 47, 270, 271, 278, 358; Figs. 1-12, 242-

ZAS

hermanni Hull, Myaptex, 48, 323, 324, 327, 328, 331; Figs. 312-316, 433.

heteroneurus Philippi, Dasypecus, 45, 109, 110; Figs. 63, 64, 66, 463,

hirsutus Ph., Clavator, 143.

hirtipes Macquart, Dasypogon, 156, 159.

hirtipes (Macquart), Hypenetes, 159.

hirtipes (Macquart), Pritchardia, 34, 37, 46, 156, 159, 161; Figs. 16-23, 412.

híirtuosus Schiner, Bathypogon, 78, 82, 84.

hyacinthium Bigot, Saropogon, 74, 76.

infernalis Wiedemann, Mallophora, 312.

incomptus Philippi, Asilus, 356.

insidiator Ph., Asilus, 278.

immisericorde n. sp.. Megametopon, 48, 313, 314, 315; Figs. 301-304, 422,

ivetteae n. sp.. Nomomyia, 48, 337; Figs. 353-357, 475.

jaujensis n. sp. Leptochelina, 46, 143, 141; Figs. 128-132, 407, 426.

Keiseri Carrera £ Papavero, Alyssomyia, 79.

keiseri (Carrera £ Papavero), Creolestes, 45, 79, 81, 84; Figs. 58, 0

landbeki Philippi, Dasypogon, 17, 147.

landbecki (Philippi), Obelophorus, 46, 147, 149; Fig. 476.

lanosus n. sp., Dasycyrton, 45, 92, 98, 99; Figs. 79, 490.

latus (Philippi), Dasypecus, 49, 110, 374.

latus Philippi, Dasypogon, 109, 371, 374.

leucopogon Ph., Clavator, 88.

longistylus Ph., A., 333.

longiterebratus Macquart, Lochmorhynchus, 290, 291, 294.

lucifer Wiedemann, Dasypogon, 165.

luctuosus Wiedemann, Dasypogon, 168.

lugens Philippi, Dasypogon, 176. (Ver fe de erratas).

lugens (Philippi), Scylaticus, 17, 46, 171, 176; Fig. 149, 157, 158, 450.

magellanicus n. sp:, Hypenetes, 46, 126, 136, 137; Figs. 108, 110-112, 418.

marginatus Ph., Erax, 291.

mayi Edwards, Asilus, 359.

" mayi (Edwards), Stizolestes, 49, 351, 359, 360; Fig. 444.

, medinae 'n. sp., Dasycyrton, 45, 93, 96, 99, 101; Fig. 86.

megastylus Philippi, Asilus, 49, 371, 372.

mellifera Lin., Apis, 187.

micans (Philippi) Dasypecus, 121.

micans Philippi, Dasypogon, 109, 110, 121.

micans (Phiiippi), Eutrichodes, 121.

micans (Philippi), Hexameritia, 17, 45, 121, 124; Figs. 34-41, 474.

minusculus n. sp. Dasycyrton, 45, 92, 101, 102; Figs. 77, 425.

modellus Bromley, Asilus, 360.

modellus (Bromley), Stizolestes, 33, 49, 350, 351, 360, 368; Figs. 390, 499.

modesta (Philippi), Atomos'a, 49, 371, 373; Figs. 406, 445.

modesta Philippi, Laphria, 373, 374.

mucidus Walker, Asilus, 341, 342.

mucidus (Walker), Philonerax, 48, 312, 344, 346; Figs. 363-365, 411.

murina (Philippi), Aphamartania, 183, 184.

murina Philippi, Cylindrophora, 182, 184.

murina (Philippi), Lynchia, 184.

murina (Philippi), Myiothera, 184.

murina (Philippi), Nomomyia, 48, 337, 339; Figs. 358-362, 456.

murina (Philipp), Theromyia, 17, 33, 47, 184, 188, 189; Figs. 184-191, 462.

murinus Philippi, Erax, 336, 339.

murinus (Phippi), Nerax, 339,

nana (Pritchard), Theromyia, 47, 183.

nigribarbis (Philippi), Alyssomy:a, 82.

nigribarbis (Philippi), Clavator, 57, 78, 82,

nigribarbís Philippi, Creolestes, 45, 81, 82, 84, 125; Figs. 54-57, 59, 60, 62, 497,

n gribarbis Philippi, Hypenetes, 82,

nigribarbis (Philippi), Pritchardia, 82.

nigricornis, Clavator, 63.

nigricornis Philippi, Dolichogaster, 63.

nigriventris (Bigot), Deromyia, 45, 113, 116; Figs. 179, 180, 366, 446.

nigriventris Bigot, Lochites, 116, 366.

nigriventris Bigot, Lochitomyia, 116.

nigriventris (Bigot), Senobasis, 116.

nigriventris Dufour, Dasypogon, 366.

nigriventris Jaennike, Mallophora, 366.

nigriventris Loew, Stenopogon, 366.

nigriventris Macquart, Hirmoneura, 366.

nigriventris Macquart, Proctacanthus, 366.

— 469 —

nigriventris Philippi, Asilus, 349, 362, 366, 367.

nigriventris (Philippi), Stizolestes, 17, 49, 350, 351, 352, 358, 362, 366, 367;

Figs. 392, 395-398, 503.

nigriventris Strobl., Dioctria, 366.

nigronasutum Bigot, Saropogon, 168, 170.

nigronasutus Bigot, Saropogon, 168.

nigronasutus (Bigot), Saropogon, 42, 46, 168, 170; Figs. 181-183.

nigrotarsatum Bigot, Saropogon, 168, 169, 170.

nitidigaster Macquart, Dasypogon, 376.

nitidigaster (Macquart), Scylaticus, 49, 171, 371, 376.

nitidula Hermann, Mallophora, 312.

nivosa n. sp., Atractocoma, 47, 259, 260, 261; Figs. 220-222, 488.

notocinereatus n. sp., Dasycyrton, 45, 92, 93, 102, 103; Figs. 85, 494.

obtusus Engel, Hypenetes, 125.

occidentale (Philippi) Megametopon, 17, 48, 313, 315; Figs. 305-311, 430.

occidentalis Philippi, Asilus, 312, 313, 314, 315.

ocrealis Rondani, Philammosius, 376.

ocrealis (Rondani), Stichopogon, 49, 371, 376.

pampina n. sp., Alyssomyia, 45, 58, 63, 65; Figs. 49, 473.

pamponeroides Edwards, Asilus, 349, 367.

pamponeroides (Edwards), Stizolestes, 49, 349, 351, 367; Figs. 399, 502.

papaveroi n. sp., Dasycyrton, 46, 93, 104, 105; Figs. 81, 491.

parvum (Bigot), Creolestes, 45, 78, 85; Fig. 61.

parvum Bigot, Bathypogon, 85, 86.

patagonensis (Macquart), Efferia, 42, 47, 282; Figs. 249, 251, 413.

patagonensis Macquart, Erax, 282,

pegnai n. sp. Theromyia, 47, 183, 187, 189; Figs. 192-196, 443.

perniger (Shiner), Araiopogon, 45, 66, 76.

pern:iger Schiner, Erax, 265.

perniger (Schiner), Nerax, 265.

perniger Schiner, Saropogon, 76.

philippii Schiner, Scylaticus, 178, 179, 180.

pictus Philippi, Dasypogon, 68, 69.

pictus (Philippi), Saropogon, 68.

poecilopus Philippi, Asilus, 49, 371, 372.

princeps (Hermann), Hypenetes, 134.

puella (Bromley), Pritchardia, 46, 157, 163; Fig. 472.

puella Bromley, Hypenetes, 163.

punctipennis Macquart, Dasypogon, 371.

punctipennis Philippi, Clavator, 57, 125, 137.

punctipennis (Philippi), Dasypogon, 49, 374.

— 470 —

punctippennis (Philippi), Hypenetes, 17, 46, 125, 126, 137; Figs. 113, 114, 116,

A e

puntarenensis n. sp. Lochmorhynchus, 48, 288, 294, 295; Figs. 262, 263b, 271,

27127 481%

pyrrhoneurus Ph., Clavator, 88.

quadrinotata (Bigot), Prolepsis, 36, 46, 166; Figs. 142-147, 430.

quadrinotatum Bigot, Cacodaemon, 166.

quadrinotatus (Bigot), Prolepsis, 166.

rubricornis (Philippi), Alyssomyia, 89.

rubricornis Philippi, Clavator, 89.

rubricornis (Philippi), Creolestes, 17, 45, 79, 86, 88, 89, 125; Figs. 50, 448.

rubricornis (Philippi), Hypenetes, 89.

rubricornis (Philippi), Pritchardia, 89.

rubripes Bigot, Scylaticus, 178, 179.

rubripes Hermann, Pronomopsis, 47, 253, 251, 255; Figs. 213, 215-219, 412.

rubrisetosus Hermann, Hypenetes, 143.

rubriventris Ph., Deromyia, 116.

rubriventris (Macquart), Eccritosia, 37, 47, 259, 279; Figs. 252, 371-377, 410.

rubriventris Macquart, Proctacanthus, 279.

rufescens Philippi, Clavator, 86.

rufescens (Philipp), Creolestes, 17, 45, 79, 86, 88, 89, 90; Figs. 51-53, 498.

rufescens (Philippi), Hypenetes, 86, 125.

rufescens (Philippi), Pritchardia, 86.

rufipes Philippi, Dasypogon, 178.

rufipes (Philippi), Scylaticus, 17, 46, 171, 178; Figs. 159, 161-163, 451.

rufiventris (Blanchard), Andrenosoma, 42, 47, 238, 239, 242; Figs. 197-202, 466.

rufiventris Blanchard, Laphria, 239, 242,

Sobmersa. sp. Hypenetes, 16, 125, 126, 139,141, 153;Figs? 1£5, 118-123, 125493

senectus Wulp, Proctacanthus, 287.

sericeus Philippi, Dasypogon, 243, 245, 374.

speciosa (Philippi), Eccritosia, 279.

speciosus Philippi, Erax, 279.

spectabilis Philippi, Asilus, 264, 265, 268.

spectabilis (Philippi), Cratolestes, 265.

spissibarbis (Macquart), Promachus, 49, 371, 375.

spissibarbis Macquart, Trupanea, 375.

splendes Philippi, Dasypogon, 121, 122.

splendens (Philippi), Hexameritia, 122, 124.

stigmatias Loew, Hypenetes, 124.

sucinopedis n. sp. Dasycyrton, 46, 93, 105, 106; Figs. 80, 480.

talabrensis Artigas, Pronomopsis, 47, 253, 256; Fig. 486.

tener (Bigot), Dasycyrton, 17, 46, 93, 104, 105, 107, 108; Figs. 72, 73, 75, 76, 84, 487.

— 471 —

tener Bigot, Holopogon, 107.

tenerum Bigot, Ho!opogon, 107.

terebratus Macquart, Dasypogon, 149.

terebratus (Macquart), Obelophorus, 46, 146, 147, 149, 150; Figs. 28-33, 467.

tertialis Bromley, Hypenetes, 161.

tertialis (Bromley), Pritchardia, 46, 157, 161, 163; Figs. 24-27, 481.

toconaoensis n. sp. Zoticus, 49, 368, 369; Figs. 400-405, 489.

tricolor Philippi, Dasypogon, 172, 174.

tricolor (Philippi), Scylaticus, 172.

tricolor (Schiner), Hexamerítia, 122.

tricolor Schiner, Triclis,-122,.123.

tumbrensis n. sp. Eremomyia, 47, 284, 285; Figs. 253-260, 479.

valdivianus Philippi, Asilus, 356, 373.

valentinei n. sp. Hypenetes, 46, 127, 129, 130, 141, 143; Figs. 124, 126,. 127,

129219

venator, Asilus, 303.

velutinus Carrera *« Papavero, Oberon, 151.

venustus Philippi, Dasypogon, 180.

venustus (Philippi), Scylaticus, 17, 36, 46, 171, 180; Figs. 151, 160, 164, 427.

veredus n. sp. Menexenus, 48, 319, 321, 322; Figs. 341-344, 424.

vexillaria n. sp.. Myaptex, 48, 324, 329, 330, 331; Figs. 323-328, 454.

vibllis nm. sp. Myaptex, 48, 324, 331, 332) FI8S. 329399) 2490

within. sp: Gratolestes, 33, 47, 209, 269; "Plg 292.299,0 221%

xanthopogon Burmeister, Asilus, 279.

zonatus Loew, Scylaticus, 170.

FE DE ERRATAS MAS IMPORTANTES

Pág.

125

144

151

171

202

228

350

375

404

412

430

176

lin.

dice debe decir

germinainú germainú

fuscipenis fuscipennas

Heximeritia Hexameritia

Neostotes Nestotes

Deromya Deromyia

Dasycyton Dasycyrton

Mallaphora Mallophora

Lochomorhynchus Lachmorhynchus

heisseri heiseri

heissert heisert

y 36 heisseri keisert

Dasysyrton Dasycyrton

rufrescens rufescens

Dicranues Dicranus

vultinus velutinus

Nitidigaster nitidigaster

keisseri heiseri

A. ”, cyanogaster, Á. cyanogaster,

A. SETA: Á. gay?,

stizolestes Stizolestes

carbonarius Philippi) carbonarius (Philippi)

brachypterus brachyptera

Chiloenstis qhiloensis

cuadrinotata quadrinotata

Pritchardia debe incluirse en la lista de Stenopogonini y Oberon en

la lista de Dasypogonini.

Agregar entre las líneas 8 y 9: Dasypogon lugens Philippi, 1865, p. 689,

Colchagua; Stuardo, 1946, p. 82; Hull, 1962, p. 228.

ESA A

RUE TA

SE TERMINÓ

DE IMPRIMIR EN LOS

TALLERES DE LA IMPRENTA

UNIVERSIDAD. DE CONCEPCIÓN

ÉL 2 DE NOVIEMBRE DE 1970

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto Central

de Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica y otra

Zoológica, incluyéndose dentro de cada Serie trabajos bio-

lógicos en su sentido más amplio, es decir, si un trabajo

versa básicamente sobre plantas o animales, se incluirá

dentro de una de las dos categorías.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tendrá una secuencia periódica, sino que

los números se publicarán tan pronto como la Comisión

Editora reciba las comunicaciones y su numeración será

continuada dentro de cada Serie.

La Comisión Editora agradece profunda y sinceramente

el valioso apoyo del señor Rector y autoridades universi-

taras.

Gayana

INSTITUTO CENTRAL DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Dejemos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, B:b'ioteca y Canje:

COMIESTON. EDETORGA

Casilla 301 — Concepción

CHILE

GAYANA

INSTITUTO CENTRAL

BIOLOGIA

ZOOLOGIA TE N? 18

LAS ESTRUCTURAS QUITINIZADAS DE LA

SPERMATHECA Y FUNDA DEL PENE DE

LOS ASILIDOS Y SU VALOR SISTEMATICO

A TRAVES DEL ESTUDIO POR

TAXONOMIA NUMERICA

(Diptera - Asilidae)

Por

JORGE N. ARTIGAS

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CH TL E

EDGARDO ENRIQUEZ FRODDEN

RECTOR

GALO GOMEZ 0. RENE RAMOS P.

VICERRECTOR SECRETARIO GENERAL

COMISIÓN EDITORA:

Mario Ricardi — Director del Instituto Central de Biología

Clodomiro Marticorena — Jefe del Departamento de Botánica

Jorge N. Artigas — Jefe del Departamento de Zoología

GAYANA

INSTEPUETO CENTRAL

BRCEOGEPA

'ZOOLOGIA NAAA Ne 18

LAS ESTRUCTURAS QUITINIZADAS DE LA

SPERMATHECA Y FUNDA DEL PENE DE

LOS ASILIDOS Y SU VALOR SISTEMATICO

A TRAVES DEL ESTUDIC POR

TAXONOMIA NUMERICA

(Diptera - Asilidae)

Por

JORGE N. ARTIGAS

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO :GA Y. Hist. de Chile, TI 14 NMISES)

LAS ESTRUCTURAS QUITINIZADAS DE LA

SPERMATHECA Y FUNDA DEL PENE DE

LOS ASILIDOS Y SU VALOR SISTEMATICO

A TRAVES DEL ESTUDIO POR

TAXONOMIA NUMERICA (*)

(Diptera - Asilidae)

JORGE N. ARTIGAS *

INTRODUCCION

Al terminar el trabajo monográfico sobre los asílidos de Chile, se en-

contró de gran valor sistemático, el estudio de las estructuras duras de la

genitalia interna de los machos, las cuales en más de una ocasión constituyeron

el único elemento que permitió separar especies muy próximas, demasiado

similares en su morfología externa y cubierta pilosa, y muchas veces sim-

pátricas. En estas especies los machos resultaron perfectamente separables,

pero las hembras debieron quedar indeterminadas o adjuntas a las series de

los machos por sus datos de colecta, práctica, que en el caso de especies

simpátricas fue necesariamente descartada. Durante el Cuarto Congreso La-

tinoamericano de Zoología, el Dr. O. Theodor, de Israel, llamó la atención

del autor sobre la gran variedad de formas que presentan las partes duras de

(1) Presentado al Primer Congreso Latinoamericano de Entomología, Cusco, Perú, Abril 1971.

Premio Bayer 1971 (en parte) al mejor trabajo presentado por científicos visitantes.

* Dr. Jorge N. Artigas, jefe Departamento de Zoología, Universidad de Concepción, Chile.

las spermathecae de las hembras de asílidos. Esta información vino a pro-

porcionar el elemento que faltaba para separar hembras de especies muy pró-

ximas. El presente trabajo es un estudio de estas estructuras, comparadas con

las fundas de los penes de los machos y éstas, a su vez, comparadas con los

caracteres taxonómicos tradicionalmente usados en este grupo.

El autor desea dejar constancia de sus agradecimientos al Sr. José Bustos

y a la Sra. Lea Mourgues, por sus colaboraciones en: dibujo técnico y di-

secciones, respectivamente.

MIAPISESRSICAMIE

LA SPERMATHECA.

En la familia Asilidae, la spermatheca presenta gran variación en tamaño

y forma, sin embargo, estas formas y tamaños son constantes dentro de los

géneros, donde observan un plan general, característico de cada uno. La

spermatheca o receptaculum seminis está constituida por partes quitinizadas

y partes blandas, principalmente de tejido glandular. El uso de toda la sperma-

theca, incluídas sus partes blandas y duras, tiene para los estudios sistemá-

ticos el inconveniente de que numerosas especies son sólo conocidas en material

de museo, donde las partes blandas han desaparecido, esto imposibilita hacer

un trabajo comparativo con todas las especies. Las partes duras, sin embargo,

proporcionan un excelente material, y se las puede estudiar en ejemplares

que han permanecido por largos años en los museos. Para los fines de este

trabajo, sólo se usaron las partes duras, las que permanecen inalterables,

luego de ser sometido todo el órgano a un tratamiento de KOH y montaje

en bálsamo de Canadá.

Las partes duras de la spermatheca, llamadas en este trabajo sperma-

theca, nacesitan de una nomenclatura especial para poder hacer las descrip-

ciones. Esta nomenclatura se propone en este trabajo; algunas partes pueden

no tener necesariamente concordancia con nombres propuestos anteriormente

para indicar partes de la spermatheca completa, observadas en fresco.

En la fig. 1 se presenta una spermatheca generalizada en diagrama;

en él se ha incluído la estructura llamada furca, que aunque no forma parte

de la spermatheca, sale junto con ella en la disección y ha resultado ser de

gran valor sistemático; posiblemente corresponde al décimo sternite abdo-

minal.

La furca o endosternum presenta, en general, la forma de una horcaja

o de una V; los brazos pueden ser largos o cortos, algunas veces muy delgados,

otrás, cortos y anchos en forma de láminas. La furca mantiene distendida

la bursa copulatrix. La spermatheca se comunica a la bursa copulatrix en

un área entre los brazos de la furca, de manera que corrientemente el ducto

común de la spermatheca parece emerger de entre ellos. En esta forma han

sido presentadas las figuras en este trabajo.

El ducto común es el ducto más ancho de todos, corrientemente, más del

doble del ancho de los ductos expulsores. Este ducto es de paredes relativa-

mente delgadas y no contiene ninguna disposición especial en su interior;

conecta la spermatheca con la bursa copulatrix.

Los ductos expulsores existen en Asilidae, en número de dos o tres. En

la parte inferior se juntan para formar el ducto común. En la parte superior,

corrientemente llevan una válvula que los separa de los ductos capsulares.

Snodgrass 1935: 566, los llama “pumping apparatus”, indicando que a lo

largo de sus paredes exteriores se ubican músculos que permiten su con-

tracción y así actuar en forma de bomba expulsora. Al ser observados con

alto aumento y contraste de fase se observa, en algunas especies, pequeñas

proyecciones laminares, las que servirían de insertores musculares. En las

preparaciones aclaradas (KOH), estos ductos se distinguen por presentarse

muchas veces arrugados, con abundantes surcos laterales, mostrando una

clara disposición para acortarse y estirarse. En la parte superior se encuentran

las válvulas, muy destacadas en algunas especies; las válvulas están rodeadas

de músculos, por lo que la región aparece ligeramente engrosada, se reco-

nocen al microscopio por su forma de V.

Los ductos capsulares comunican las cápsulas con los ductos expulsores.

Estos ductos varían de longitud y grosor entre las especies. Son ductos simples,

cuya ánima varía de un-tercio a cinco-sextos del grueso total del ducto. La

pared exterior es lisa y en algunas especies presenta glándulas adosadas a

ellos, las cuales se manifiestan en las preparaciones aclaradas por la presencia

de pequeños canalículos quitinosos, engrosados en el extremo, estos son los

canalículos glandulares que conducen el producto glandular al interior de

los ductos capsulares a través de pequeños orificios en la pared de estos.

Los canalículos glandulares han sido dibujados aparte en algunas esperma-

thecae donde ellos son especialmente abundantes o destacados; por su difi-

cultad para ser observados y clasificados mo han sido usados para fines

sistemáticos.

Las cápsulas se encuentran en la parte más distal de la spermatheca

y su forma es muy variable, desde globosa hasta la de un tubo, algunas veces

en espiral. Las distintas formas han sido clasificadas para informar el pro-

grama de computación. Las cápsulas varían además en número, presentándose

de a dos o tres, coincidiendo con el número de ductos capsulares. En algunas

especies, de tres cápsulas, la cápsula del medio es claramente mayor y su

ducto capsular es más largo que los de las laterales. En algunas cápsulas

se observan canalículos glandulares, concentrados en lugares variables, algunas

veces en la base, otras en el extremo o en un costado.

La gran variación de formas y tamaños de las spermathecae pueden

observarse en las láminas adjuntas, las cuales se han presentado a una misma

escala para facilitar la comparación.

FUNDA DEL PENE.

Constituye una estructura fuertemente quitinizada, la mayor parte de

las veces, alargada, con un ápice bien definido y una parte posterior más

alta. La forma varía, así como también el ápice. La funda del pene está

unida a la base de los gonopodos, dirigida hacia atrás, apareciendo muchas

veces por entre los epandria y proyectándose ligeramente más allá de los

bordes distales de éstos; en otras, él o los apéndices se recurvan hacia arriba,

apareciendo algunas veces por sobre el borde dorsal de los epandria. La funda

del pene encierra el pene (aedeagus), el cual es visible por transparencia,

luego de aclarada la funda: en la parte posterior del pene, inserta el apodema

eyaculador, usualmente platiforme y alargado, con su parte posterior más

ancha y redondeada. La base del apodema eyaculador es ligeramente más

gruesa y a ella se une la parte posterior del pene, formando la bomba que

impulsa el semen; el extremo distal del apodema varía de un individuo a

otro, pero sin modificar su plan general, la diferencia es más bien del borde

y del tamaño; individuos más viejos presentan los bordes más dilatados; esta

característica es propia de las zonas quitinosas, que siguen agregando material

luego de formado el imago. En este borde insertan los poderosos músculos,

que impulsan el apodema. El ápice de la funda del pene es la parte más va-

riable, en algunas, éste es un corto y sencillo ducto sin ornamentaciones, en

otras, está formado por dos o tres ramas largas, algunas veces en forma de

Hagelos o bien presenta el extremo distendido hacia los costados, como se

puede observar en vista dorsal. El cuerpo de la funda del pene tiene ocasional-

mente procesos ornamentales, en los costados y en la parte ventral; en la parte

dorso-basal, se proyectan los brazos, que insertan con los gonopodos, su es-

tructura €s variable y corrientemente se rompe al separarlas de los gono-

podos, por lo que no han sido utilizados en el análisis.

Los dibujos en este trabajo son en su mayoría los usados en Artigas

1970, se han agregado algunos nuevos y otros han sido mejorados. Estos

dibujos no están en una misma escala entre ellos, ni éstos con los de las

spermathecae.

METODOS

DISECCION Y MONTAJE.

Para obtener la spermatheca, se procede a efectuar una disección. Al

ejemplar seco se le secciona el abdomen, entre los segmentos tercero y cuarto,

esto tiene especial importancia cuando se desconoce el tipo de spermatheca

que posee la especie y hasta donde ésta se extiende hacia adelante; en cáp-

sulas filiformes, éstas alcanzan hasta el quinto segmento.

El abdomen seccionado se sumerge en alcohol 75% para humedecerlo

y luego se deja en KOH hasta que se aclare. La práctica permite conocer

de antemano el porcentaje de KOH y el tiempo necesario para obtener un

buen aclarado. En líneas generales se usaron con éxito las siguientes combi-

naciones de porcentajes y tiempo: 4 horas a 600C. en KOH 40%: 8 horas

a 600C en KOH 25%; 48 horas a 200C en KOH 109%; hervido por 15 mi-

nutos en KOH 10%.

Para disectar se abre el abdomen a lo largo de una de las pleuras hasta

encontrar la spermatheca, la cual es visible por las cápsulas, muchas veces

oscuras, y por la furca que siempre es oscura. Al retirar, éstas van rodeadas

de abundantes tráqueas y restos de materia grasa y tejidos. Bajo agua, se

procede a limpliar la spermatheca, cuidando de no romper los ductos capsu-

lares, corrientemente muy frágiles. Una vez limpia, se procede de dos modos

según se desee hacer una preparación permanente o una preparación de

estudio. La preparación de estudio puede efectuarse en medio de montaje

Hoyer, directamente desde el agua, y luego de seca se sella con Cutex. Una

preparación permanente se hace pasando por una serie de alcoholes, luego

por Aceite de Clavos, para finalmente montar en Bálsamo de Canadá. Este

método tiene la ventaja de ser permanente, pero durante el paso por las

series de alcoholes es muy difícil mantener intactos los frágiles ductos capsu-

lares y muchas veces las cápsulas pierden su contorno natural. Mejores pre-

paraciones se obtienen en Hoyer, siendo la duración de la preparación dis-

cutible.

Las preparaciones microscópicas llevan un número, el cual corresponde

al de la colección del Departamento de Zoología de la Universidad de Con-

cepción; este número se indica al término de cada descripción (prep. micr.

lA ). Las fundas de los penes se guardan humedecidas en glicerina, en

“Frascos genitalia”, clavados en el mismo alfiler de espécimen.

MEDICIONES Y DIBUJOS.

Cada preparación de spermatheca se fotografió por partes, usando la

misma combinación de aumentos (400x) para todas las preparaciones, con

el objeto de mantener una sola escala en todos los dibujos. El perfil de los

dibujos fue obtenido copiando las fotografías y los detalles dibujados a mano

alzada, luego de observadas las preparaciones al microscopio, con contraste

de fase. Las medidas fueron obtenidas por medio de un planímetro de ruede-

cilla pasado sobre las fotografías, aplicando luego un factor de corrección

para micrones.

La escala válida para todas las figuras de spermathecae 5 y siguientes,

está adjunta a la fig. 5.

DESCRIPCION DE LAS SPERMATHECAE Y FUNDAS

DE*BENE DES BOS ASILIDOS "CHILENOS

Sub-familia DASYPOGONINAE

Tribu Dasypogonini

Araiopogon Carrera

Cinco especies, de Chile: Cyanogaster (Loew), fraternus (Bigot), fulvicornis

(Macquart), gay: (Macquart), perniger (Schiner).

A. cyanogaster (Loew).

Furca pequeña, de brazos cortos, sin proceso basal. Ducto común, muy

corto, los ductos se mantienen separados desde antes de la iniciación de los

3 ductos expulsores; base de los ductos expulsores con abundantes procesos

tuberculiformes alrededor del tubo; válvulas muy reducidas, inconspicuas;

ductos capsulares muy largos, filiformes, ligeramente espiralados en el ápice;

cápsulas diminutas, sólo expresadas como un pequeño engrosamiento del

ápice del ducto, posiblemente el ducto mismo constituye la cápsula (fig. 15) —

prep. micr. NO0 9. Funda del pene recta, con un pequeño proceso dorsal y

otro ventral en el ápice simple; dorso notablemente dentado; algunos pro-

cesos baso-ventrales; apodema eyaculador ancho. Pene simple, casi tan largo

como la funda (fig. 16).

A. fraternus (Bigot).

Furca pequeña y gruesa, de brazos cortos, sin proceso basal, borde basal

más bien hendido. Ducto común corto, trifurcado por un corto espacio al

final del cual aparentemente se encuentra la válvula, de donde los 3 ductos

expulsores aparecen indefinidos; base de los gruesos ductos capsulares con

algunos procesos de inserción muscular, aproximadamente la mitad apical

de los ductos capsulares enrrollados en forma de espiral, el ápice ligeramente

engrosado; cápsulas no definidas (fig. 5) — prep. micr. NO 12. Funda del

pene aproximadamente sigmoidea, ápice simple y agudo, base alta con

procesos laterales; dorso con dos procesos dentiformes en el cuarto apical;

apodema eyaculador largo, ovalado; pene tan largo como la funda (fig. 6).

A. fulvicornis (Macquart) (= Oberon fulvicornis (Macq.)

Artigas 1970: 152).

Furca gruesa, de brazos cortos, semitruncados en el ápice, proceso basal

corto y ancho. Ducto común corto; tres ductos expulsores, más angostos

que los ductos capsulares y menos de 10 veces su largo, claramente separados

por las válvulas que se presentan destacadas; cápsulas muy poco diferenciadas

de los ductos capsulares, aparecen como la prolongación de éstos, formando

una espiral de aproximadamente cinco vueltas (fig. 8) — prep. micr. NO 100.

Funda del pene de forma sigmoidea, ápice truncado de término simple, en

la parte ventral del cuarto apical hay una suave proyección en forma de

espina; sin procesos importantes, sólo las proyecciones baso-dorsales de co-

nexión a los gonopodos se destacan claramente; apodema eyaculador casi

tan largo como el largo de la funda, su parte posterior es semicircular y

el pedicelo bastante delgado; el pene es más angosto que la funda y tan

largo como ésta, siguiendo su misma forma (fig. 7).

Furca pequeña y gruesa, de brazos cortos, sin proceso basal; ducto común

moderado; 3 ductos expulsores con procesos de inserción muscular destacados;

ductos capsulares largos, espiralados en más de la mitad apical; ápice ligera-

mente engrosado; cápsulas no definidas (fig. 10) — prep. micr. NO 11. Funda

del pene aproximadamente sigmoídea, ápice simple y agudo, base alta con

procesos laterales; dorso de la funda con dos procesos dentiformes en el

tercio apical; un proceso en el tercio apical ventral; apodema eyaculador

largo; pene de igual largo que la funda (fig. 9).

OBSERVACIONES. De las cuatro especies estudiadas, Araiopogon cyano-

gaster (Loew) no concuerda con el plan general del género respecto a la

spermatheca y a la funda del pene; la ubicación de esta especie en el género

es dudosa.

A) A

Deromyia Philippi

Dos especies, ambas de Chile: nigriventris Bigot y fuscipennis Blanchard.

D. fuscipennis Blanchard.

Furca pequeña, de brazos cortos y con un corto y débil proceso basal.

Ducto común corto; los tres ductos expulsores y ductos de las cápsulas no dife-

renciados, aparentemente formando un solo tubo; válvulas inconspicuas; cáp-

sulas largas, formando un grueso tubo que se atenúa suavemente hacia el

ápice, que es redondeado (fig. 12) — prep. micr. NQ 14. Funda del pene

alta en la base, proyectada hacia adelante por un angosto tubo levemente

bifurcado en el ápice, desde la parte basal se proyectan hacia adelante dos

procesos ventrales agudos que alcanzan hasta el quinto apical; en el dorso de

la parte basal lleva dos procesos espiriformes dirigidos hacia adelante; pene

tan largo como la funda, siguiendo aproximadamente la misma forma; apo-

dema largo, ligeramente más corto que la funda del pene, su extremo distal

ensanchado y ornamentado (fig. 11).

D. nigriventris (Bigot).

Furca pequeña de brazos cortos redondeados en el ápice, proceso basal

corto. Ducto común muy corto; los 3 ductos expulsores y los ductos capsu-

lares sin diferenciación, salvo que la mitad distal antes de llegar a las cáp-

sulas es más angosta; válvulas no definidas; cápsulas largas, en forma de un

tubo grueso con el quinto apical bruscamente atenuado formando una punta

(fig. 13) — prep. micr. NO 98. Funda del pene de base alta, proyectada hacia

adelante en un tubo ligeramente bifurcado en el ápice; borde dorsal sin

ornamentaciones; dos procesos basales ventrales que se proyectan hacia ade-

lante alcanzando hasta la iniciación del quinto apical; apodema eyaculador

un-sexto más corto que el largo total de la funda del pene; pene casi tan

largo como la funda, siguiendo aproximadamente su forma (fig. 14).

OBSERVACIONES. Las fumdas de pene y las spermathecae de este

género se mantienen dentro de un plan común para las especies estudiadas,

especialmente las fundas de los penes que se diferencian sólo por los pro-

cesos spiniformes presentes en el dorso de la funda de D. fuscipennas.

Neoderomyia n. gen.

Oberon Carrera Papavero. Artigas 1970, p. 151 (en parte).

TIPO DEL GENERO: Deromyia fuluipes Philippi.

Cabeza en vista frontal un-cuarto más ancha que alta; vertex débilmente

hundido; ocelario bien desarrollado; ocelos destacados. Cabeza en vista lateral;

área postocular un-quinto del ancho del ojo; cara plana, sin jiba facial, ligera-

mente más angosta a la altura de las antenas, en el borde oral muy débilmente

levantada. Antenas largas; tercer segmento antenal largo, ligeramente fusiforme,

sin espina en la parte dorsal, en el extremo con un pequeño microsegmento

que lleva una espina en el centro de una depresión circular. Mystax reducido

a una hilera de gruesas cerdas alineadas en el borde oral, dirigidas hacia abajo.

Mesonotum con manchas y líneas oscuras, pilosidad rala y corta; 1-3 pares de

cerdas dorso-centrales. Scutellum sin cerdas. Costados del postmesonotum sin

pelos. Cerda marginal abierta; R, alcanza el borde del ala antes del ápice;

R, alcanza el borde del ala después del ápice; cuarta celda posterior abierta;

celda anal abierta pero muy angosta en el borde del ala. Espinas de las tibias

frontales presentes. Abdomen largo, tres-y-media vez el largo del tórax, delgado,

brillante, la pilosidad es escasa y corta. Genitalia del macho pequeña, rotada

en 300-900; hypandrium corto y ancho; epandrium con una profunda hen-

didura en forma de V en el borde posterior que no lo alcanza a dividir;

epandrium e hypandrium separados; gonopodos cortos y globosos; funda del

pene larga y angosta, subrectilínea, el ápice bifurcado. Genitalia de la hembra

truncada, con seis espinas de ápice redondeado en los acantophorites; furca en

forma de €; ductos de la spermatheca largos y delgados, formando un espiral

en el extremo.

Este género es próximo a Deromyia Philippi, del cual se puede separar

por la forma alargada del tercer segmento antenal (fig. 2) y por la cuarta

celda posterior cerrada. En Deromyia, el tercer segmento antenal es dilatado

en el centro (fig. 3) y la cuarta celda posterior es cerrada antes del borde

del ala.

El nombre Neoderomyia hace referencia a su proximidad con Deromyia

Philippi. Una especie, Chile.

Neoderomyia fulvipes (Philippi) nov. comb.

Deromyia fulvipes Philippi, 1865, p. 706. Santiago; Stuardo, 1946, p. 92, Hull

1962, p. 250.

Oberon fulvipes (Philippi). Artigas, 1970, p: 15%:

Furca gruesa en forma de semicírculo, sin proceso basal, los brazos son cor-

tos y gruesos, casi tan gruesos como en el resto de la furca. Ducto común corto,

poco diferenciado de la bursa; tres ductos expulsores sin procesos de inserción

muscular; válvulas definidas; ductos capsulares muy largos, entre treinta y

cuarenta veces más largos que los ductos expulsores, en su base poseen

procesos de inserción muscular en una distancia igual al largo total de los

ductos expulsores (aparentemente la bomba expulsora está ubicada después

de las válvulas de esta especie); las cápsulas no se presentan definidas, apa-

recen como la continuación de los ductos capsulares que tienden a formar un

espiral amplio de tres a cuatro vueltas; no hay separación visible entre los

ductos y las cápsulas (fig. 18) — prep. micr. NO 31. Funda del pene larga y

angosta, ligeramente expandida en el centro de la parte ventral; ápice truncado

con dos largos procesos agudos dorsales que se curvan ligeramente hacia

arriba; largo de estos procesos, aproximadamente un-tercio del largo de la

funda; hay una hendidura lateral en la base de la funda que forma pro-

cesos dorsales y ventrales; apodema eyaculador amplio en su ápice, el pedicelo

corto y delgado; el pene es más largo que la funda, apareciendo por la parte

posterior de ésta, en general sigue la forma de funda (fig. 17).

Saropogon Loew

Noventa especies, una especie en Chile: nigronasutus (Bigot). No se estudió

por escasez de material.

Theromyia Williston

Tres especies, dos en Chile: murina (Philippi) y pegna: Artigas.

T. murina (Philippi).

Furca de brazos anchos, cortos y abiertos; proceso basal corto y ancho.

Ducto común corto, casi indistinto, junto a la zona de comunicación con

la bursa aparecen dos manchas quitinizadas de forma oval; tres ductos ex-

pulsores cortos, más angostos que los ductos capsulares; válvulas no bien

definidas, aparentemente ubicadas en la iniciación de los ductos capsulares;

ductos capsulares cinco veces más largos que los ductos expulsores y apro-

ximadamente dei doble de su grosor; cápsulas bien definidas, expresadas por

CAD y

un engrosamiento y oscurecimiento de los mismos ductos, la mitad apical

curvada hacia abajo (fig. 21) — prep. micr. NO 26. Funda del pene muy ela-

borada, en general de forma alargada, el ápice es sagitado y curvado hacia

arriba, con dos procesos laterales, el extremo es agudo; en la parte ventral,

a la altura de la iniciación de la mitad apical, hay un notable proceso angulado

dirigido hacia adelante; en la parte posterior de la funda hay varias pro-

longaciones de distintos grados de quitinización que dificultan su descripción;

apodema eyaculador amplio en su parte posterior, ligeramente truncado,

más bien grueso; pene poco definido, posiblemente es más corto que la

funda, llegando sólo hasta la altura del proceso ventral, no se distingue la

conexión con el ápice (fig. 22).

T. pegnai Artigas.

Furca de brazos cortos, del mismo grueso que en el resto de la furca,

formando una U abierta; proceso basal corto y ancho, tan ancho como el

largo de la parte horizontal de la furca. Ducto común corto, menos de la

mitad del largo de los ductos expulsores; en su base hay dos formas ovaladas

de bordes irregulares adosadas a la bursa copulatrix; tres ductos expulsores

cortos y delgados, su ancho es la mitad del ancho de los ductos capsulares;

válvulas bien definidas, es clara la iniciación de los ductos capsulares después

de las válvulas, pues estos son ligeramente más gruesos en su inicio; ductos

capsulares 5 a 6 veces más largos que los ductos expulsores, a su término

comienzan las cápsulas sin separación definida, éstas aparecen como engro-

samiento de los ductos; cápsulas más gruesas en su tercio basal, atenuándose

ligeramente hacia el ápice y curvadas hacia abajo desde su mitad; las cápsulas

son más oscuras que el resto de la spermatheca (fig. 19) — prep. micr. NO 79,

Funda del pene similar a T. murina (fig. 20).

OBSERVACIONES. Las dos especies de Theromyia estudiadas presentan

el mismo plan general con pequeñas variaciones que corresponden a varia-

ciones interespecíficas.

La tribu Dasypogonimi en lo que respecta a sus representantes chilenos

no presenta estructuras conforme a un plan común. Claramente aparecen

tres grupos: (1) Theromyia, (2) Araiopogon (excepto cyanogaster) y (3) Araio-

pogon cyanogasier con Neoderomyia fulvipes (Phil) mn. comb. (= Oberon

fuluipes (Phil.). Sólo la estructura general de la furca parece ser común en

la tribu.

0 Y AE

Tribu Phellini

Obelophorus Schiner

Dos especies, ambas de Chile: terebratus (Macquart) y landbecki (Philippi).

O. landbecki (Philippi).

Furca en forma de Y con los brazos superiores anchos en la base y agudos

en el ápice; proceso basal largo y delgado, más de dos veces el largo de cada

brazo. Ducto común corto, cerca de un-tercio del largo de cada uno de los

tres ductos expulsores, los cuales están separados de los ductos capsulares

por las poco notorias válvulas; los ductos capsulares son de igual grosor que

los expulsores, su largo es 5 a 6 veces el largo de los ductos expulsores; los

ductos capsulares se engruesan continuamente hacia el ápice hasta formar las

cápsulas, las cuales son tubulares, con un engrosamiento antes del ápice, el

cual podría corresponder a la cápsula misma, posterior a este engrosamiento

continúa un tubo de igual grosor que el de los ductos expulsores (fig. 25) —

prep. micr. NO 94. No se estudió la funda del pene.

O. terebratus (Macquart).

Furca en forma de Y, con los brazos gruesos continuados hacia atrás

formando el proceso basal, el cual es largo, cerca de 3 veces el largo de

cada brazo; no hay separación notoria entre los brazos y el proceso. Ducto

común corto, un-tercio del largo de los ductos expulsores; tres ductos expul-

sores de un-cuarto del largo de los ductos capsulares; válvulas bien definidas

ubicadas en un ligero engrosamiento entre los dos ductos, los cuales son

aproximadamente del mismo grueso; los ductos capsulares se engruesan suave-

mente en el cuarto apical hasta formar las cápsulas con las cuales no hay

clara separación; las cápsulas son tubulares con un ligero engrosamiento en

la base del tercio apical, luego del engrosamiento la cápsula se adelgaza,

terminando en un agudo ápice (fig. 23) — prep. micr. N.os 18 y 56. Funda

del pene de ápice sencillo, truncado, en la base con proyecciones laterales

dirigidas hacia atrás, en la parte basal central hay también procesos de forma

irregular dirigidos hacia atrás; apodema eyaculador corto y ancho, sin ped:-

celo notable; el pene es más largo que la funda y aparece por la parte

posterior de ésta; se distingue claramente la llegada del pene hasta el ápice

de la funda (fig. 24).

0% y, 5 E

OBSERVACIONES. Las spermathecae de ambas especies presentan una

eran similitud con pequeñas diferencias específicas; las furcas poseen un plan

general similar, sin embargo en detalle varían notablemente como se aprecian

en las figuras correspondientes.

Tribu Laphystini

Hexameritia Speiser

Una especie (Chile): micans (Philippi).

H. micans (Philipp).

Furca en forma de U con los extremos ligeramente divergentes, los brazos

delgados formando en la parte basal una suave curva; los extremos de la

furca se continúan en un material débilmente quitinizado que tiende a formar

una conexión entre ambos extremos. Ducto común, aproximadamente del

mismo grosor de los ductos capsulares, separados de éstos por pequeñas vál-

vulas poco notorias; ductos capsulares aproximadamente 12 veces el largo

de los ductos expulsores; estos tres tubos mantienen el mismo grosor en

toda su longitud; cápsulas tubulares en general de grosor similar a los tubos

capsulares, atenuándose ligeramente hacia el extremo; las cápsulas forman

una espiral de dos y media vueltas, sin coloración, ligeramente más

oscuras que los ductos capsulares (fig. 26) — prep. micr. NO 19. Funda del

pene con la mitad apical doblada hacia abajo, formando un ángulo de 1200

con el eje, el ápice aparece truncado en forma oblicua; en la parte basal

ventral hay un proceso que se pronuncia ligeramente hacia adelante y más

largo hacia atrás; apodema eyaculador largo y angosto, ligeramente más largo

que la funda, el pedicelo casi tan grueso como la parte posterior; pene,

destruído por el aclaramiento en KOH (fig. 27).

Tribu Stenopogonini

Alyssomyia Hull

Tres especies, todas de Chile: brevicornis (Philippi), bulbosa Artigas y

pampina Artigas.

A. brevicornis (Philippi).

Furca con dos brazos cortos dirigidos hacia arriba y dos lóbulos, ligera-

mente divergentes dirigidos hacia abajo, formando en general una letra H;

la quitización de las distintas partes de la furca varía, dificultando la pre-

cisión de su contorno. Ducto común, aproximándose a la mitad del largo de

los ductos expulsores; tres ductos expulsores, ligeramente engrosados en su

parte apical, especialmente en el extremo donde están ubicadas las válvulas;

ductos capsulares más angostos que los ductos expulsores y 3 a 4 veces más

largos; el ducto mediano ligeramente más largo que los laterales; cápsulas

globosas, bien definidas, oscurecidas; la cápsula mediana 2 veces más grande

que las cápsulas laterales, las cuales son similares entre sí (fig. 31) — prep.

micr. NO 84. La funda del pene no se estudió por falta de material.

A. bulbosa Artigas.

Furca grande en comparación con la spermatheca, casi del mismo largo

que la cápsula mediana y sus ductos; formada por dos piezas similares unidas

por material menos quitinizado, en conjunto de forma imprecisa debido a

los diferentes grados de quitinización de sus partes (ver figura). Ducto común

y los tres ductos expulsores pequeños, poco definidos, difícilmente observables,

luego del tratamiento de aclaración por KOH, es posible que las válvulas

se encuentren en la base de los ductos capsulares; ductos capsulares ligera-

mente más delgados que los ductos expulsores, el ducto mediano ligeramente

más largo; cápsulas globosas, oscuras, la cápsula mediana aproximadamente

el doble mayor que las cápsulas laterales (fig. 29) — prep. micr. NO 82, Funda

del pene de forma sigmoídea, fuertemente atenuada en el ápice, el cual es

recurvado hacia la parte ventral; apodema eyaculador grande, casi 2 veces el

largo total de la funda, más ancho en la parte posterior, pedicelo delgado;

pene del mismo largo de la funda pero más angosto en la base, aproximada-

mente la mitad del ancho, en el ápice de igual ancho (fig. 28).

0, PANOR

A. pampina Artigas.

Furca en forma de una placa con los bordes laterales doblados y el

borde posterior extendido y emarginado, los contornos son de difícil defi-

nición por los distintos grados de quitinización. Ducto común, corto, cerca

de un-séptimo del largo de los ductos expulsores; tres ductos expulsores, ligera-

mente engrosados en su extremo y luego atenmuados en el área correspon-

diente a las válvulas, las cuales son poco definidas, destacándose su posición

por estar ubicadas entre las 2 expansiones de los ductos; ductos capsulares

expandidos en la base por un corto trecho, luego se continúan en un delgado

tubo de grosor uniforme hasta el ápice; el ducto mediano tiene una y media vez

el largo de los ductos laterales; cápsulas globosas, oscuras, la cápsula mediana

es dos y media veces más grande que las cápsulas laterales (fig. 30) — prep.

micr. NO 85. No se estudió la funda del pene.

OBSERVACIONES. En este género aparece notable la uniformidad del

plan general de la spermatheca, muy característico por su elemento ventral

más desarrollado; las furcas, sin embargo, no proporcionan un buen elemento

diagnóstico por la imprecisión de su contorno. La única funda del pene

estudiada corresponde a un tipo común a otros géneros de asilidos, el cual

tiende a mantenerse constante dentro del género, es posible que esto también

suceda en Alyssomyia.

Creolestes Hull

Cinco especies, todas de Chile; rubricornis (Philippi), rufescens (Philippi),

keisert (Carrera € Papavero), nigribarbis (Philippi), parvum (Bigot..

C. rubricornis (Philippi).

Furca en forma de U, delgada en toda su extensión, formando ángulos

redondeados de 900 en la base de los brazos, en los ápices de estos, se produce

una divergencia y luego una pequeña curva hacia el interior. Ducto común,

poco dfinido; tres ductos expulsores, ligeramente más gruesos hacia el ápice,

donde se ubican ias pequeñas y débilmente definidas válvulas; ductos capsu-

lares de grosor uniforme, aproximadamente la mitad del grosor máximo

de los ductos expulsores; cápsulas alargadas, ovales, aproximadamente dos

veces más largas que anchas, su superficie se presenta suavemente estriada

en el sentido longitudinal, las 3 cápsulas similares (fig. 36) — prep micr. NQ 95,

No se estudió la funda del pene.

C. keiseri (Carrera y Papavero).

Furca en forma de U, con los brazos torcidos hacia el interior, el borde

posterior extendido (ver figura). Ducto común, angosto, corto, cerca de un-

quinto del largo de los ductos expulsores; tres ductos expulsores, con abun-

dantes microprocesos de inserción muscular, el ápice de los ductos expulsores

se atenúa y las válvulas posiblemente están ubicadas en el extremo, no están

definidas; ductos capsulares delgados, aproximadamente de un-tercio a un-

cuarto del grosor mayor de los ductos expulsores y su longitud es dos veces

la de éstos; cápsulas ovales, globosas, oscuras, aproximadamente 2 veces más

largas que anchas, con finas estriaciones longitudinales; las 3 cápsulas son

similares (fig. 35) — prep micr. NO 87. Funda del pene, la mitad apical es

atenuada y ligeramente doblada ventralmente en el ápice, el ápice es agudo;

la mitad basal está formada por varios procesos largos, dirigidos dorsalmente

y hacia atrás formando un conjunto de difícil definición (ver figura); apodema

evaculador ancho, ligeramente más largo que el largo de la funda, el pedicelo

aparece poco definido; pene indefinido, posiblemente desaparece durante

el aclarado (fig. 34).

C. nigribarbis (Philipp).

Furca de bordes poco definidos, en la parte basal presenta forma más

quitinizadas y un proceso dirigido hacia atrás en ambos ángulos posteriores

(e452)= prep. micr. N0'13 y en otra (tig. 33) — prep. micr. N9 114 la

furca aparece como 2 piezas separadas, conectada con un elemento de débil

quitinización. Ducto común ligeramente más corto que los ductos expulsores;

tres ductos expulsores gruesos, atenuados suavemente hacia el ápice, donde

vuelven a engrosarse por un corto trecho, para alojar las biem definidas

válvulas; los ductos presentan algunas ornamentaciones en toda su extensión,

que pueden corresponder a procesos de inserción muscular; ductos capsu-

lares delgados, de grosor uniforme, aproximadamente de un-quinto del mayor

grosor de los ductos expulsores, y cerca de cuatro y media veces la longitud

de éstos; cápsulas globosas, ovuladas, oscuras, dos veces más largas que anchas,

con finas estriaciones longitudinales (figs. 32 y 33) — prep. micr. N.os 13 y 114.

Funda del pene no se estudió.

OBSERVACIONES. Por escasez de materiales no se estudiaron las es-

pecies: rufescens y parvum. Las furcas presentan en este género variaciones

de consideración que se originan por la variedad de quitinización de sus

partes, al estudiar dos furcas de la especie nigribarbis, encontramos que ésta

puede estar formada por dos piezas separadas (fig. 32) o por una pieza en

O —

forma de U (fig. 33), de ahí que no extrañe la diferencia entre la furca de

rubricornis (fig. 36) y el resto de las especies. Los ductos expulsores pre-

sentan también variaciones y parecería no existir un plan común a ellos,

incluso la gran reducción de las válvulas en keiseri. Es sin embargo, en los

ductos capsulares y en las cápsulas mismas, que el modelo se repite sin varia-

ciones en todo ei género o en las especies estudiadas.

Dasycyrton Philippi

Diez especies, todas chilenas: arrayanensis Artigas, coquimbensis Artigas,

gibbosus Philippi, lanosus Artigas, medinae Artigas, minusculus Artigas,

notocinereatum Artigas, papaveroi Artigas, sucinopedis Artigas, tener

Bigot.

D. lanosus Artigas.

Furca en forma de Y, con los brazos anchos y agudos en el ápice, proceso

basal fuertemente atenuado, ápice agudo, unido a la furca aparece una es-

tructura en forma de media luna, débilmente quitinizada. La furca es pequeña

en comparación con el largo de los ductos, aproximadamente diez y media

veces menor que los ductos y las cápsulas juntos. Ducto común muy corto,

casi imperceptible; tres ductos expulsores cortos, cerca de veinte veces más

cortos que los ductos capsulares y las cápsulas juntos; válvulas poco notorias,

pero discernibles; ductos capsulares, largos y de grosor uniforme, continuando

en las cápsulas de igual forma, las cuales conforman un espiral de cuatro

y media vueltas; no hay separación disernible entre las cápsulas y los ductos

capsulares (fig. 37) — prep. micr. NO 83. La funda del pene con la mitad

apical, ligeramente sigmoídea, el ápice dirigido ventralmente; en la parte basal

formada por varios procesos largos y dirigidos hacia atrás; apodema eyaculador

casi tan largo como la funda del pene, incluído los procesos, la parte posterior

ensanchada, sub-circular, el pedicelo es más bien ancho, pero claramente

distinguible del extremo posterior; pene aparentemente destruído durante

el aclaramiento, sin embargo, la parte posterior aparece entre los procesos

basales de la funda (fig. 38).

D. minusculus Artigas.

Furca de dos piezas anchas, cuyo ápice es agudo, en su parte basal están

unidas por el proceso basal que es corto, ancho y trunco, casi tan ancho

como el ancho mayor de los brazos. Ducto común poco definido, de existir

ppp CE

éste, sería muy corto; tres ductos expulsores, delgados, ligeramente engrosados

en su extremo donde se alojan las válvulas que son inconspicuas; ductos

capsulares de igual grosor que el grosor medio de los ductos expulsores y

su longitud es cercana a cuatro veces el largo de éstos; los ductos capsulares

forman un espiral de dos y media a tres y media vueltas, incluídas las cápsulas;

las cápsulas están representadas por un ligero engrosamiento del octavo apical

del ducto, sin embargo, el ápice mismo es agudo (fig. 39) — prep. micr. NO 86.

Funda del pene con la mitad apical aguda, recta fuertemente atenuada; mitad

basal formada por largos procesos; apodema eyaculador, tan largo como la

funda incluídos los procesos, más ancho en la parte posterior, pedicelo

grueso; el pene es visible sólo en la parte posterior de la funda sobre los

procesos, el resto es destruído durante el aclarado (fig. 40).

D. tener Bigot.

Furca en forma de U con los brazos más angostos que la zona transversal

y ligeramente expandidos en el ápice tomando la forma de un pie; proceso

basal, tan ancho como el tramo horizontal de la furca, y prolongado por un

espacio tan largo como el largo de los brazos, sin embargo, su borde pierde

quitinización y se hace indefinido. Ducto común prácticamente ausente o

muy cortos; los tres ductos expulsores poseen poco antes en su mitad, una

notable corona de abundantes procesos agudos de inserción muscular, el resto

del ducto no presenta estructuras especiales, salvo un muy ligero engrosa-

miento en su ápice, lugar en que se alojan las válvulas; ductos capsulares

más angostos que los ductos expulsores; los ductos capsulares mantienen un

grosor uniforme desde su base hasta el ápice y no presenta ordenación espiral

ni modificación alguna que pueda interpretarse como cápsulas (fig. 4) — prep.

micr. NO 96. No se estudió la funda del pene.

OBSERVACIONES. Derivado del escaso número de individuos que com-

pone la serie de la especie de este género, sólo se han podido estudiar 3

especies, de ellas lanosus y minusculus, presentan un plan general similar,

aunque con importantes diferencias interespecíficas; de igual modo la funda

de los penes de ambas especies poseen un modelo común. La especie tener

no comparte el modelo de las anteriores, mi por su furca, ni por su sperma-

theca; en ellas es notable la corona de procesos de inserción muscular de los

ductos expulsores y la ausencia total de cápsulas o de formación de espirales.

Estas estructuras permiten inferir una modificación a la posición sistemática

de esta especie (ver conclusiones).

Dasypecus Philippi

Una especie (Chile): heteroneurus Philippi.

D. heteroneurus Philippi.

Furca corta y ancha, de brazos gruesos, cuyos bordes inferiores forman

una emarginación aguda en forma de V. Ducto común, largo, aproximada-

mente del mismo largo de los ductos expulsores; los tres ductos expulsores y

capsulares sin separación aparente, válvulas indefinidas; ductos capsulares li-

geramente más gruesos y aproximadamente del mismo largo que los ductos

expulsores; cápsulas, expresadas como una atenuación, de color más oscuro

que los ductos capsulares, formando un espiral de una y media vueltas, en el

ápice aparece una minúscula estructura globular (fig. 45) — prep. micr. NO 101.

Euthrixius, nomen novum

Euthrix Philippi, 1865, p. 690 (preocupado Lepidoptera, Meigen 1830).

TYPO DEL GENERO: Dasypogon venustus Philippi.

Este género es próximo a Scylaticus, del cual se separa por tener el

mystax escaso y reducido al borde oral, la cara plana sin giba facial y los

machos tienen los epandria anchos de borde posterior redondeado. La sperma-

theca es característica por las tres destacadas cápsulas alargadas y por los

largos ductos expulsores (fig 66), la funda del pene es corta con cuatro pro-

cesos apicales (fig. 65). Para comparación de spermatheca y funda de pene

de Scylaticus ver figs. 63 y 64, respectivamente.

Dos especies, Chile.

Euthrixius rufipes (Philippi) nov. comb.

Dasypogon rufipes Philippi, 1865, p. 691; Stuardo, 1946, p. 82; Hull, 1962,

p. 228.

Seylaticus philippu Schiner, 1868, p. 163, Chile; Stuardo, 1946, p. 21; Hull,

1962, p.. 1945.

Scylaticus rubripes Bigot, 1878, p. 435; Stuardo, 1946, p. 81; Hull 1962, p. 145.

Scylaticus rufipes (Philippi). Artigas, 1970, p. 178.

Esta especie se reconoce por poseer el escaso mystax de pelos amarillos

y el abdomen de color uniformemente negro brillante.

Euthrixius venustus (Philippi) nov. comb.

(figs. 65 y 66)

Dasypogon venustus Philippi, 1865, p. 689, posiblemente cerca de Santiago.

Scylaticus venustus (Philippi). Bigot, 1878, p. 22; Hull, 1962, p. 145; Artigas.

1970, p. 180,

Furca formando una estructura casi circular, cuyos elementos presentan

algunos pliegues, aumentan el grosor en la parte basal de los brazos y en

la conexión entre ambos (ver figura). Ducto común indefinido; tres ductos

expulsores gruesos, de color uniforme, ligeramente atenuados en el extremo,

donde se presentan reunidos algunos procesos de inserción muscular, en el

mismo lugar están ubicadas las válvulas, que son poco definidas; ductos cap-

sulares de un-tercio a un cuarto del grosor de los ductos expulsores, excepto

en el tramo basal en que mantienen por un trecho el grosor del ápice de

los ductos expulsores; en el extremo de los ductos capsulares antes de la

formación definitiva de las cápsulas aparecen canalículos quitinizados más no-

tables que los existentes a lo largo del resto del tubo; cápsulas alargadas,

suavemente atenuadas hacia el extremo y curvadas, formando cerca de un

medio círculo (fig. 66) — prep. micr. NO 63. Funda del pene de cuerpo corto,

con un gran orificio de salida y dos procesos dorsales y dos ventrales más

largos que el cuerpo de la funda; apodema eyaculador con una gran expan-

sión posterior, pedicelo casi tan largo como el largo del apodema; pene

más largo que el cuerpo de la funda, sobresaliendo la parte posterior y ter-

minando claramente en el orificio ubicado entre los procesos apicales (fig. 65).

ASA 1 E ANIOS

Esta especie se reconoce por el mystax escaso de pelos amarillos con

algunos pelos negros en los bordes; el borde posterior de los tergites abdo-

minales segundo al quinto con notable micropubescencia blanca, formando

cuatro definidas líneas blancas sobre el abdomen.

Graptostylus Hull

Una especie (Chile); dolosus Hull.

G. dolosus Hull.

Furca en forma de V con los brazos agudos en sus extremos; proceso basal

corto y ancho como el grosor máximo de la furca. Ducto común, indefinido;

a partir de la fusión de los tres ductos se continúan éstos como tubos gruesos,

atenuados en el extremo donde claramente modifican su estructura a partir

de un punto concreto, para continuarse en un ducto más angosto y de grosor

SL, O

uniforme, el cuai termina en un ducto más sencillo y más angosto, tan largo

como once veces el largo de cualquiera de los dos ductos anteriores; la

indefinida ubicación de las válvulas no permiten diferenciar los dos primeros

ductos. Si las válvulas estuviesen ubicadas, luego del primer tramo (el tramo

engrosado), éste constituiría el ducto expulsor, pero si ellas estuvieran ubicadas

al extremo del segundo tramo, sería este segundo tramo el ducto expulsor,

lo que aparentemente es más posible derivarlo de su constitución más dura;

si así fuera, resultaría que el ducto común de otras especies estaría en ésta

constituído por tres tubos separados (el primer tramo). El tercer tramo consiste

en un largo tubo delgado de grosor uniforme, que forma en su extremo un

espiral de cuatro a cinco vueltas; las cápsulas no aparecen definidas (fig. 44) —

prep. micr. NO 21. La funda del pene es corta, mitad apical sencilla y recta,

mitad basal amplia, casi siete veces más ancha que la mitad apical; apodema

eyaculador tan largo como la funda, de ancho uniforme sin pedicelo dis-

tinguible (fig. 43).

OBSERVACIONES. La spermatheca de G. dolosus se distingue de la

de otras especies, por la particular conformación de los ductos en su conexión

a la bursa copulatrix. Al disponer de más material debe procederse a ubicar

la posición de las válvulas, con el objeto de nominar propiamente los ductos

correspondientes.

Hypenetes Loew

Once especies, nueve en Chile: asiliformis Wulp, eritesi Artigas, davidsont

Artigas, digitatus Artigas, fucosus Artigas, magellanicus Artigas, puncti-

pennis (Philippi), schineri Artigas, valentinei Artigas.

H. critesi Artigas.

Furca formada por dos piezas divergentes, unidas por membranas menos

quitinizadas. Ducto común corto, indefinido; tres ductos expulsores, de grosor

uniforme, ligeramente más gruesos en el extremo correspondiente a las vál-

vulas; ductos capsulares, de grosor uniforme, aproximadamente de la mitad del

grosor de los ductos expulsores y cinco veces el largo de éstos; cápsulas tubu-

lares oscuras, ligeramente atenuadas hacia el ápice, formando un espiral de

tres vueltas (fig. 46) — prep. micr. NO 123. Funda del pene, con el ápice casi

tan alto como el cuerpo de la funda, presentando un proceso dorsal y uno

ventral, cortos espiniformes; apodema eyaculador en forma de abanico, con

el pedicelo más largo que el resto del apodema; pene tan largo como la funda

y comunicado al exterior por el amplio orificio apical; el pene tiene forma

similar a la funda (fig. 47).

H. davidsoni Artigas.

Furca pequeña formada por dos piezas, ligeramente sigmoídea, unidas

por la base y parte de su cara interior por una membrana débilmente qui-

tinizada. Ducto común corto y grueso; tres ductos expulsores, delgados, menos

de un-tercio del grosor del ducto común, terminando en un engrosamiento

correspondiente a las válvulas; ductos capsulares aproximadamente cinco y

media veces más largos que los ductos expulsores y ligeramente más angostos;

cápsulas bien definidas, tubulares, cinco veces más gruesas que el grosor de

los ductos capsulares y aproximadamente una y media vez el largo de éstos;

las cápsulas de color oscuro, forma una espiral de dos y media vueltas; las tres

cápsulas son similares (fig. 53) — prep. micr. NO 106. Funda del pene, gruesa,

tan alta en la base como en la parte pre-apical; en el ápice termina en un

corto tubo truncado, suavemente atenuado, inmediatamente bajo él hay un

proceso agudo de similar longitud dirigido hacia arriba; en la parte posterior

posee una emarginación lateral que alcanza a cerca de un-tercio de la longitud

total de la furca; apodema eyaculador en forma de abanico, con un destacado

pedicelo de aproximadamente la mitad del largo del resto del apodema;

pene similar, en forma a la funda, llegando claramente a comunicarse con

el tubo apical, sin relacionarse con el proceso espiniforme apical (fig. 54).

H. digitatus Artigas.

Furca formada por dos piezas alargadas, de ápice romo, más ancha en

la base; ambas conectadas por una membrana débilmente quitinizada. Ducto

común, aproximadamente de un-tercio del largo de los ductos expulsores y

tres veces el grosor de cada uno de ellos; tres ductos expulsores, delgados,

de grosor uniforme excepto en la zona de las válvulas, donde se engruesan

visiblemente; ductos capsulares, aproximadamente Y veces más larggos que

los ductos expulsores, de grosor similar a éstos; cápsulas tubulares, más gruesas

en su parte mediana y atenuadas hacia la base y el ápice formando un espiral

de dos y media vueltas; en el ápice de las cápsulas se produce un ligero en-

grosamiento (fig. 52) — prep. micr. NO 91. Funda del pene similar a davidson:,

difiere en el grosor del pequeño tubo apical y en la forma ligeramente más

irregular del apodema eyaculador; pene más angosto que la funda, clara-

mente conectado al tubo apical (fig. 51).

H. fucosus Artigas.

Furca formado por dos piezas, fusionadas en la base; estas piezas son

casi dos y media veces más anchas en el ápice que en su base. Ducto común

indefinido; ductos expulsores delgados, débilmente limitados por la existencia

de válvulas inconspicuas; ductos capsulares aproximadamente tres y media

veces más largos que los ductos expulsores y del mismo grosor; hacia su ex-

tremo se engruesan suavemente hasta formar cápsulas tubulares bien definidas,

las cuales forman un espiral de dos y media vueltas (fig. 56) — prep.

micr. NO 99. Funda del pene similar en línea géneral a especies anteriores,

pero el orificio de salida está ubicado en la parte baja del extremo e in-

mediatamente sobre él hay un destacado proceso espiniforme curvado hacia

arriba (fig. 57).

H. punctipennis (Philipp).

Furca similar a digitatus. Ducto común corto, de un-tercio del largo de

los ductos expulsores y tres veces su grueso; tres ductos expulsores, ensanchados

a la altura de las válvulas; ductos capsulares de grosor uniforme, igual a la

de los ductos expulsores y cerca de treinta veces más largos; cápsulas tubulares,

bien definidas, más angostas en su base, formando un espiral de dos y media

vueltas; en el ápice presenta un débil engrosamiento (fig. 48) — prep.

micr. NO 90. Funda del pene similar a digitatus pero el proceso spiniforme

está ubicado más ventralmente y separado del tubo por una distancia igual

a tres veces el grosor de la base del tubo; apodema eyaculador en forma de

abanico, ligeramente más largo que la funda; pene más corto que la funda,

con una bolsa en la mitad apical ventral, que llega hasta la pared de la funda

(fig. 49).

H. valentinei Artigas.

Furca formada por dos piezas separadas, divergentes desde su mitad

apical, unidas por una membrana débilmente quitinizada. Ducto común corto,

globoso, mostrando claramente la conexión individual de cada uno de los

tres ductos expulsores; ductos expulsores una y media vez el largo del ducto

común, de grosor uniforme, sin engrosamiento en el área de las válvulas; ductos

capsulares ligeramente más angostos que los ductos expulsores, excepto en

un corto tramo basal en donde son casi tan gruesos como los ductos pre-

cedentes, su largo es aproximadamente igual a treinta veces el largo de los

ductos expulsores; cápsulas, tubulares, bien definidas, atenuadas en la base,

claramente más gruesas en el tramo central, formando una espiral de dos

y media vueltas (fig. 50). No se estudió la funda del pente.

OBSERVACIONES. Las especies estudiadas muestran un claro plan

común, donde las diferencias interespecíficas estarían indicadas en parte por

pequeñas variaciones de la furca, de los ductos expulsores y de las partes

apicales de la funda de los penes. Una característica especifica aparentemente

importante es la proporción entre los largos de los ductos expulsores y de

los capsulares, proporciones que varían entre dos y media veces para fucosus

y treinta veces para punctipennis y valentinei. Las especies punctipennis y

valentinet resultan muy próximas, considerando la furca, la relación entre los

ductos y las cápsulas; se diferencian más bien en la forma del ducto común

y de los ductos expulsores.

Leptochelina Artigas

Una especie (Chile): jaujensis Artigas.

Por escasez de material no se estudió este género.

Pritchardia Stuardo

Cuatro especies, todas de Chile: curicoensis Artigas, hirtipes (Macquart),

puella (Bromley), tertialis (Bromley).

P. curicoensis Artigas.

Furca en forma de Y, de brazos tan gruesos como el proceso basal,

éste es aproximadamente la mitad del largo de los brazos. Ducto común,

indefinido; tres ductos expulsores, engrosados en la parte superior, correspon-

diente a la ubicación de las válvulas; ductos capsulares de grosor uniforme,

aproximadamente la mitad del grueso de los ductos expulsores y cerca de

diecisiete veces más largos que éstos; en el extremo se presenta un débil en-

grosamiento; en la figura los extremos de los ductos capsulares aparecen ex-

tendidos sin forma de espiral, sin embargo éste existe al estado natural en

forma débil, deshaciéndose al montar la preparación microscópica (fig. 58) —

prep. micr. NO 80. No se estudió la funda del pene.

P. hirtipes (Macquart).

Furca en forma de Y, los brazos terminados en punta, el proceso basal

angosto, pasando hacia arriba luego de unir los dos brazos. Ducto común,

indefinido; tres ductos expulsores, con una alteración anillada en su cuarta

basal, que corresponde a procesos de inserción muscular, en el extremo estos

ductos se engrosan para alojar las válvulas; ductos capsulares ligeramente

más delgados que los ductos expulsores, excepto en su tramo basal, donde

son semejantes a éstos; el largo de los ductos capsulares aproximadamente

trece veces el largo de los ductos expulsores; los ductos capsulares terminan

formando un débil espiral de tres y media vueltas (fig. 61) — prep. micr. NQ 80,

Funda del pene alargada, con el quinto apical atenuado formando un tubo

recto cuyo diámetro aproximado es de un-séptimo del alto en la mitad de

la funda; apodema eyaculador, largo, tan largo como la funda, con un pe-

dicelo equivalente a un-tercio del largo total del apodema; pene cónico, más

largo que la funda, sobresaliendo en la parte posterior y claramente conectado

al pequeño tubo apical (fig. 62).

P. tertialis (Bromley).

Furca en forma de Y, los brazos anchos en la base y atenuados en el

extremo; el proceso basal, delgado como la mitad apical de los brazos, con-

tinúa a través de la fusión de éstos y aparecen levemente en la parte su-

perior. Ducto común, indefinido; tres ductos expulsores, sencillos, de grosor

uniforme, engrosados en el área de las válvulas; ductos capsulares ligeramente

más angostos que los ductos expulsores y aproximadamente doce veces más

largos que éstos; cápsulas no definibles; los ductos capsulares terminan en

bien definidas espirales de cinco y media vueltas (fig. 60) — prep. micr. NO 57,

Funda del pene, atenuada en el extremo del ápice, formada por un tubo

sencillo, ligeramente doblado hacia arriba; apodema eyaculador, alargado,

algo más largo que la funda; pene más largo que la funda, apareciendo por

la parte posterior y continuándose hacia el ápice, siguiendo aproximadamente

la funda del pene (fig. 59).

OBSERVACIONES. Las tres especies estudiadas de este género presentan

un modelo común y las variaciones específicas están circunscritas a detalles

menores de la estructura de la furca y del espiral formado por los ductos

capsulares. Los ductos capsulares no muestran espiral terminal, sin embargo

éstos existen en forma semejante al presentado por hirtipes (fig. 61).

Prolepsis Walker

Tres especies, una especie de Chile: quadrinotata (Bigot).

Por escasez de material no se estudió este género.

Seylaticus Loew

Veintinueve especies, tres en Chile: chilensis (Macquart), cuncigaster

Artigas, lugens (Philippi).

S. chilensis (Macquart).

Furca de una pieza en forma de U, bordeada de una membrana menos

quitinizada; sin proceso basal. Ducto común, corto, aproximadamente la

mitad del largo de los ductos expulsores; tres ductos expulsores con abun-

dantes procesos de inserción muscular en la mitad apical; válvulas bien de-

finidas; ductos capsulares de grosor uniforme, igual a la mitad del grosor

de los ductos expulsores y tres veces más largos que éstos; cápsulas similares,

globosas, casi tan largas como dos veces su ancho (fig. 63) — prep. micr. NO 30,

Funda del pene de forma sigmoídea, uniformemente atenuada hacia el

ápice; apodema eyaculador grande, más largo que la funda, formado por

una gran expansión posterior, que en el espécimen estudiado aparece estriada

y con un pedicelo fino, aproximadamente un-tercio del largo de la parte ex-

pandida; pene tan largo como la funda y su forma es similar a ésta (fig. 64).

OBSERVACIONES. De las cinco especies chilenas asignadas a este género

en el trabajo “Los Asilidos de Chile” (Artigas, 1970), solo chilensis (Macquart),

cuneigaster Artigas y lugens (Philippi), comparten estructuras genitales comu-

nes en su plan morfológico general, además de poseer una similar estructura

de mystax y la cara. Las dos especies restantes, rufipes (Philippi) y venustus

(Philippi) que comparten otras características morfológicas, han sido asignadas

al género Euthrixius, nomen novum para el género Euthrix Philippi 1865,

preocupado en Lepidoptera por Meigen, 1830.

Los géneros chilenos de la tribu Stenopogonini no presentan ninguna es-

tructura de las furcas, spermathecas o fundas de penes que corresponden a un

plan común para la tribu. En relación con las cápsulas se encuentran varia-

ciones tan notables como el débil espiral filiforme de P. curicoensts y las cáp-

sulas globulares de Creolestes, con la modificación importante presente en

Alyssomyia, en que hay un desarrollo mayor de la cápsula mediana. Las cápsulas

de S. venustus son únicas entre el material de asílidos estudiados, igualmente

lo es la funda del pene de esta especie.

Subfamilia LAPHRIINAE

Tribu Andrenosomini

Andrenosoma Rondani

Cuarenta y tres especies, una en Chile: rufiwentris (Blanchard).

A. rufiventris (Blanchard).

Furca en forma de U, con los brazos agudos en el extremo y convergentes

en la mitad superior; ducto común corto, indefinido; tres ductos expulsores,

ligeramente atenuados hacia su extremo, en la región de las válvulas 1.0 hay

engrosamiento; ductos capsulares de grosor uniforme, aproximadamente media

vez más largos que los ductos expulsores; cápsulas tubulares de grosor más

o menos uniforme, dobladas sin presentar una ordenación uniform” (fig. 68) —

prep. micr. NO 29. Funda del pene compuesta de dos partes, un cuerpo y

un ápice, formado por tres elementos, los cuales son tan largos como el cuerpo

de la funda y forman un ángulo de 900 con el ei del cuerpo y en su mitad

superior se curvan suavemente hacia adelante; en la parte antero-ventral del

cuerpo hay un gran proceso dirigido hacir atrás, ligeramente más corto que

el cuerpo; el apodema eyaculador forma un gran abanico con un pedicelo corto;

pene de forma y longitud semejante al cuerpo de la funda, claramente

conectado a la base de los procesos apicales (fig. 67).

OBSERVACIONES. Esta única especie chilena del género y de la tribu,

presenta un modelo de estas estructuras, único entre los asílidos chilenos y

hay que inferir que está naturalmente bien separado de todos ellos.

Tribu Atomosina.

Lamprozona Loew

Tres especies, dos especies en Chile: auricincta Loew, chilensis (Hermann).

L. auricincta Loew.

Furca en forma de U, con los brazos más gruesos en la parte basal y

agudo en los ápices, que se curvan ligeramente hacia el exterior. Ducto común

indefinido; los tres ductos expulsores y ductos capsulares sin separación visible;

las válvulas no se distinguen; cápsulas bien destacadas, más gruesas en la parte

central con el ápice agudo y recurvado, formando entre una a una-y-media

vueltas (fig. 70) — prep. micr. NO 34. Funda del pene, alta en la base y

atenuada hacia el ápice, donde se prolonga en forma de tres procesos delgados

que rodean el orificio de salida; apodema eyaculador, ligeramente más largo

que la funda, con la parte posterior más amplia, atenuándose suavemente

hasta formar el pedicelo que no se diferencia notablemente del resto; pene

del mismo largo que la funda pero más angosto, claramente conectado a la

base de los procesos apicales (fig. 69).

OBSERVACIONES. La funda del pene y la spermatheca de esta especie

no presentan similitud con las estructuras correspondientes en otros asílidos

chilenos.

Sub-familia MEGAPODINAE

Pronomopsis Hermann

Cuatro especies, dos especies en Chile: rubripes Hermann, talabrensts

Artigas.

P. rubripes Hermann.

Furca en forma de una Y de brazos cortos, gruesos y truncados; el proceso

basal tan ancho como los dos brazos juntos, atenuado distalmente. Ducto

común indefinido; tres ductos expulsores, dilatados suavemente hacia su ex-

tremo, donde son dos y media vez más gruesos que en su base (ubicación de

las válvulas); ductos capsulares muy largos y gruesos, tan largos como vein-

tiuna veces el largo de los ductos expulsores, en su parte más ancha, tan

anchos como el lugar de implantación de las válvulas; durante su curso, se

adelgazan en el centro para volver a engrosar en el tramo siguiente y terminar

suavemente atenuados en un tubo, cuyo diámetro es de cerca de diez veces

menor que el ancho en el tramo más grueso, en el extremo hay una pequeña

y débil cápsula (fig. 73) — prep. micr. NO 32. Funda dcl pene, con un

proceso distal que en su extremo forma una espina recurvada; en la parte

dorsal hay una estructura que se proyecta hacia adelante, por sobre el proceso

distal; apodema eyaculador aproximadamente una-y-media vez el largo de la

funda, es ancho en su extremo posterior, atenuándose suavemente hacia el

ápice, sin definir el pedicelo; pene más corto que la funda, desembocando

en la parte dorsal de la funda, antes del término del proceso distal (fig. 74).

NÓ

P. talabrensis Artigas.

Furca en forma de Y de brazos cortos, anchos y truncados; proceso basal

ligeramente más ancho que el ápice de cada brazo y tan largo como la

longitud de ambos brazos juntos. Ducto común indefinido; tres ductos

expulsores, ligeramente más gruesos hacia el ápice, alcanzan una-y-media vez

el grueso de su base en el lugar en que se alojan las válvulas; ductos cap-

sulares largos, aproximadamente diez a once veces el largo de los ductos

expulsores, suavemente engrosados hacia el ápice, excepto en los dos-décimos

apicales, donde se atenúan hasta formar un fino tubo que termina en la cápsula;

cápsulas diminutas, ovaladas, no más largas que el ancho de la parte más

gruesa de los ductos capsulares (fig. 72) — prep. micr. NO 58. Funda del

pene (fig. 71).

OBSERVACIONES. Las estructuras presentadas por las 2 especies es-

tudiadas mantienen un modelo común, claramente separables de otros grupos.

Sub-familia ASILINAE

Atractocoma Artigas

Una especie (Chile): nivosa Artigas.

No se estudió material de esta especie.

Chilesus Bromley

Una especie (Chile): geminatus Bromley.

No se estudió material de esta especie.

Cratolestes Hull

Dos especies, ambas de Chile: chiliensis (Macquart), wirthi Artigas.

C. chiliensis (Macquart).

Furca muy grande, liriforme, con brazos tan largos como los ductos cap-

sulares, anchos en la base, agudos en el ápice; proceso basal ancho, tan ancho

como el largo de dos cápsulas. Ducto común, corto, pero disernible; tres

ductos expulsores, suavemente atenuados hacia el ápice; la mitad apical, con

abundantes micro-procesos de inserción muscular; válvulas definidas; ductos

capsulares ligeramente atenuados hacia el ápice, de la mitad del grosor de

los ductos expulsores y dos veces el largo de éstos; cápsulas globosas, apro-

ximadamente una y media vez, más largas que anchas (fig. 77) — prep. micr.

N90 33. Funda del pene, con largos procesos apicales, tan largos como dos veces

el largo del cuerpo de la funda; en el área baso-dorsal hay dos notables procesos

correspondientes a las conexiones con los gonopodos; apodema eyaculador,

moderado, ligeramente más corto que el cuerpo de la funda, el angosto pedi-

celo compromete la mitad del apodema; pene, casi la mitad del largo del

cuerpo de la funda y más angosto, claramente conectado a la base de los tres

procesos apicales (fig. 78).

C. wirthi Artigas.

Furca liriforme, con los brazos largos y delgados, separados en la base

por una distancia aproximadamente de seis veces el grueso de la base de

cada brazo; proceso basal tan ancho como la separación de los dos brazos

y ligeramente atenuado hacia el extremo. Ducto común definido, muy corto;

tres ductos expulsores de grosor uniforme, con ornamentaciones rugosas, po-

siblemente procesos, en toda su extensión; área de las válvulas bien definidas;

ductos capsulares más gruesos en la base, donde son de igual grosor que

los ductos expulsores, se atenúan hasta formar un largo tubo de grosor uni-

forme, el cual es aproximadamente catorce veces el largo de los ductos ex-

pulsores; cápsulas esféricas (fig. 75) — prep. micr. NO 59. Funda del pene, alar-

gada, con tres largos procesos apicales, tan largos como el cuerpo de la funda;

apodema eyaculador moderado, más bien angosto con un pedicelo que com-

promete tres-cuartas partes del apodema; pene más corto que la funda, vi-

siblemente conectado a la base de los procesos apicales (fig. 76).

OBSERVACIONES. Las estructuras de este género corresponden a un

modelo común, diferenciándose las especies principalmente en las proporciones

de la furca, la longitud proporcional entre los ductos y los detalles secundarios

de la funda del pene. En conjunto, permiten reconocer esta especie de entre

el resto de las estudiadas.

Cratopoda Hull

Dos especies, ambas de Chile: emarginata Artigas, helix (Bomley).

C. emarginata Artigas.

Furca en forma de Y, brazos formando una V, de grosor uniforme en casi

toda su extensión, excepto en el ápice; proceso basal moderado, dos veces el

= Hs

ancho de los brazos. Ducto común ausente; tres ductos expulsores, ensanchados

en el centro, presentando además un moderado ensanchamiento en el área

de las válvulas; ductos capsulares de grosor uniforme, similar al menor grosor

de los ductos expulsores y tres veces el largo de éstos; cápsulas globosas, muy

erandes, tan largas como el largo de la furca, de paredes débiles y de color

claro, prácticamente hialinas luego de aclaradas, excepto en el tercio basal

donde son suavemente anuladas (fig. 79) — prep. micr. N.os 28 y 60. Funda

del pene con el ápice curvado hacia abajo, en forma de tubo terminando en

tres procesos apicales, dirigidos hacia arriba; en la parte dorsal apical, hay un

proceso aplanado dirigido hacia adelante; cuerpo de la funda más largo en

la parte basal; apodema eyaculador casi tan largo como la funda, más bien

angosto y atenuado suavemente hacia su base, pedicelo no definido; pene algo

más corto que la funda, manteniendo la forma de ésta y conectándose clara-

mente a la base de los procesos apicales (fig. 80).

C. helix (Bromley).

Furca en forma de Y, de brazos con grosor uniforme, excepto el ate-

nuamiento del ápice; proceso basal tan ancho como tres veces el ancho medio

de los brazos y ligeramente más ancho en el borde posterior. Ducto común,

ausente; ductos capsulares gruesos, angostos en la base, llegan separados a

unirse a la bursa copulatrix, el ápice es ancho y truncado; ductos capsulares de

grosor uniforme, aproximadamente un-tercio del grosor de los ductos expulsores

y quince veces el largo de éstos; cápsulas muy grandes, globosas, alargadas,

tres veces más largas que anchas, de paredes delgadas, casi hialinas después

de aclaradas, excepto en el tercio basal suavemente anulado (fig. 8) — prep.

micr. NQ 25. Funda del pene con tres procesos apicales basales, el del centro

agudo, los de los costados con el ápice expandido; el proceso apical aparece

como la continuación natural del pene; en la parte dorsal de la mitad apical

de la funda hay un proceso dirigido hacia adelante, más grande que los pro-

cesos apicales ventrales; apodema eyaculador tan largo como la funda del pene,

angosto, con un pedicelo bien definido, derivado de una expansión ventral que

lo destaca; pene, cerca de la mitad del largo de la funda, conectado (o éste es

su ápice) al proceso apical ventrocentral (fig. 82).

OBSERVACIONES. Las dos especies de este género mantienen un modelo

común en las estructuras estudiadas. Las diferencias especificas están propor-

cionadas por los detalles de formas de los ductos expulsores y del ápice del

pene, los cuales permiten separar claramente estas especies. Una característica

notable del género es la conexión separada de los ductos expulsores con la

bursa copulatrix,

Eccritosia Schiner

Seis especies, una de Chile: rubriventris (Macquart).

E. rubriventris (Macquart).

Furca de gran tamaño, liriforme, con los brazos más anchos en su ápice;

el proceso basal es menos quitinizado y aproximadamente la mitad del largo

de los brazos. Ducio común corto, casi de un-tercio del largo de los ductos

expulsores; dos ductos expulsores gruesos, de aspecto globosos, cuyo largo

es más de tres veces su ancho mayor, estos ductos disminuyen bruscamente de

grosor para formar la cámara de las válvulas; ductos capsulares casi dos veces

el largo de los ductos expulsores, y sólo la mitad del grosor existente a la

altura de las válvulas; las dos cápsulas son globosas, oscurecidas, tan anchas

como el ancho máximo de los grandes ductos expulsores (fig. 83) — prep. micr.

N.os 64 y 116. Funda del pene de cuerpo corto y alto, continuado en dos

largos procesos tubulares, casi cuatro veces más largos que el cuerpo de la

funda; los procesos apicales poseen en su parte baso-dorsal y dorso apical una

membrana quitinizada en forma de una larga y extendida cresta; apodema

eyaculador muy pequeño, tan largo como el cuerpo de la funda; pene corto,

extendido desde la mitad del cuerpo de la funda hasta la base de los pro-

cesos apicales (fig. 84).

OBSERVACIONES. En esta especie se muestra una característica muy

especial, cual es la existencia de sólo dos elementos capsulares con sus corres-

pondientes ductos, situación que volveremos a encontrar en el género Myaptex,

donde muchas de las estructuras parciales de estos elementos se asemejan; el

gran desarrollo de los dos ductos expulsores de Eccritosta no están presentes en

Myaptex. La funda del pene también muestra un plan general similar en

ambos géneros (dos procesos apicales y cuerpo pequeño), pero en Myaptex

están ausentes las crestas dorsales de los apéndices apicales (ver. figs. 106, 108,

110 y 112).

Efferia Coquillet

Ciento ochenta y nueve especies, una en Chile: patagonensis (Macquart).

Por escasez de material no se estudió esta especie.

Eretomyia, nomen novum

Eremomyia Artigas 1970, p. 284 (Preocupado Diptera, Stein 1898).

Una especie (Chile): tumbrensis Artigas.

E. tumbrensis Artigas.

Furca liriforme, grande, brazos de grosor uniforme; proceso basal, menos

de la mitad del largo de los brazos, y en su parte media, tres veces el ancho

de éstos, pero su extremo distal es ensanchado. Ducto común, corto, en forma

de una cámara formada por la base de los tres ductos expulsores; ductos ex-

pulsores largos, suavemente atenuados hacia el ápice, donde vuelven a en-

grosarse ligeramente en el área de las válvulas; ductos capsulares casi tan

largos como los ductos expulsores y aproximadamente un-tercio del grosor de

éstos; cápsulas globosas, atenuadas en el ápice, con los cuatro-quintos apicales

más oscuros que el quinto basal (fig. 85) — prep. micr. NO 67. Funda del

pene larga y angosta, con el ápice formando un tubo de cerca de la mitad

del largo total, que presenta suaves ondulaciones; en la parte dorsal media

hay dos procesos bajos, en forma de cresta; desde la base de la funda del

pene nacen dos procesos largos, rectos y agudos, que dirigiéndose hacia ade-

lante, paralelos a la funda, terminan cerca de su ápice; apodema eyaculador,

corto, atenuado hacia la base; pene sobresaliendo ligeramente hacia atrás de

la funda, se continúa hacia adelante hasta conectar la base del tubo apical

(fig. 86).

OBSERVACIONES. En este género es notable la estructura de la funda

del pene, especialmente por los dos grandes procesos basales, que deben cons-

tituír un importante factor de aislación sexual, y constituyen un importante

elemento estructural, de separación, con el género Lochmorhynchus, del cual

es muy próximo. Las cápsulas presentan una interesante diferencia de quit:-

nización, pero ésta no es única, pues también se encuentra en Lochmorhynchaus,

Philonerax y en algunos Myaptex. La furca liriforme es común a muchos

géneros.

Lochmorhynchus Engel

Cuatro especies; tres especies en Chile: borrori Artigas, griseus (Guerin),

puntarenensis Artigas.

L. borrori Artigas.

Furca liriforme, de brazos muy delgados y largos, tendientes a aproxi-

marse antes del ápice, para luego curvarse divergiendo; proceso basal más

grueso que los brazos, ligeramente expandido en su extremo, tan largo como

un-tercio el largo de los brazos. Ducto común, destacado; tres ductos expulsores,

tres veces el largo del ducto común, más anchos en la mitad basal; válvulas

pequeñas, pero definidas; ductos capsulares, ligeramente más angostos que

el tramo angosto de los ductos expulsores, de grosor uniforme en toda su

extensión, siete veces más largo que los ductos expulsores; cápsulas globosas,

ligeramente atenuadas en el ápice, oscurecidas, excepto en la zona de inserción

del ducto capsular (fig. 89) — prep. micr. N.os 40 y 125. Funda del pene, larga,

cilíndrica, atenuada en el extremo de donde nacen tres largos apéndices api-

cales casi rectos, tan largos como tres-cuartos el largo de la funda, ligeramente

expandido en su extremo posterior y con un largo y delgado pedicelo de casi

dos veces el largo de la parte posterior expandida; pene corto, su parte basal

está a poca distancia de la iniciación de los procesos apicales de la funda, sin

que se pueda precisar si éste se continúa a lo largo de éstos o termina en

sus bases (fig. 90).

L. griseus (Guerin).

Furca liriforme, brazos delgados, ligeramente expandidos en el ápice, en

su base más gruesos, formando el tramo horizontal de la furca; proceso basal,

moderado, aproximadamente de un-tercio el largo de los brazos. Ducto común,

bien definido, ligeramente mayor que la mitad del largo de los ductos ex-

pulsores; tres ductos expulsores, ligeramente más angostos en la parte superior;

válvulas pequeñas, pero bien definidas; ductos capsulares, algo más angostos

que la parte más angosta de los ductos expulsores, de grosor uniforme, cerca

de tres veces el largo de éstos; cápsulas globosas, oscurecidas, excepto en el

tercio basal (fig. 88) — prep. micr. NO 37. Funda del pene, larga, cilíndrica,

presentando algunas zonas más delgadas; en el ápice lleva tres procesos apicales

rectos, tan largos como tres-cuartos el largo del cuerpo de la funda; apodema

eyaculador, más largo que el cuerpo de la funda, con un largo y delgado

pedicelo, dos y media veces más largo que el extremo posterior, que es li-

geramente expandido; pene corto, se inicia poco antes de la base de los pro-

cesos apicales (fig. 87).

L. puntarenensis Artigas.

Furca liriforme, de brazos muy delgados, paralelos en cuatro-quintos de

su extensión, en la base hay una zona ligeramente quitinizada, que forma el

tramo horizontal; proceso basal moderado, su grosor es un-tercio del ancho

existente en la base de los brazos y su largo es un-tercio el largo de éstos,

ca pao

Ducto común, definido, casi tan largo como los ductos expulsores; tres

ductos expulsores pequeños, cortos, ligeramente expandidos en el extremo en

la zona de las válvulas; ductos capsulares tan angostos como la parte angosta

de los ductos expulsores, de grosor uniforme y tan largos como veinte veces el

largo de éstos; cápsulas globosas, ligeramente atenuadas en el extremo, oscuras,

en algo más de la mitad de la parte superior (fig. 9) — prep. micr. N. 81.

Funda del pene ligeramente atenuada hacia el ápice, con tres procesos apicales

rectos, tan largos como el largo del cuerpo de la funda; apodema eyaculador

largo, ligeramente más largo que el cuerpo de la funda, suavemente engrosado

hacia el extremo; pene corto, menos de la mitad del largo del cuerpo de la

funda, terminando en la base de los apéndices apicales (fig. 92).

OBSERVACIONES. Las 3 especies chilenas de este género presentan un

definido plan común para las estructuras estudiadas. Las furcas permiten, por

sus variaciones, distinguir a cada especie, igual cosa sucede con las fundas

de los penes. La relación en longitud entre los ductos expulsores y los ductos

capsulares varían de tres a veinte veces, proporcionando un buen carácter

separatorio interespecifico. La especie puntarenensis se destaca por sus mi-

núsculos ductos expulsores. Parte de estas estructuras presentan gran similitud

con los de Philonerax chilechicoensis (ver observaciones en esa especie).

Lochyrus Artigas

Tres especies, todas de Chile; balmacedensis Artigas, crassus (Bromley),

frezieri Artigas.

L. crassus (Bromley).

Furca en forma de Y, con los brazos más bien largos y agudos, gruesos

en su base, formando en esta parte, junto con el proceso basal, una V; el

proceso basal es tan largo como el tramo grueso de los brazos. Ducto común,

corto y poco definido; tres ductos expulsores, gruesos en su tercio basal y en

el ápice, donde se ubican claramente las válvulas; ductos capsulares más bien

gruesos, tan gruesos como la parte angosta de los ductos expulsores y cinco

veces más largos que éstos, su grosor es uniforme en toda su extensión, excepto

en su ápice, en donde se ensancha suavemente hasta formar las cápsulas;

cápsulas globosas, alargadas, tan largas como dos y media veces su ancho y

con un pequeño proceso recurvado en su ápice (fig. 93) — prep. micr. NQ 36.

Funda del pene alta en su base, atenuándose hacia el ápice hasta terminar

en un tubo, que se curva hacia abajo, y luego parcialmente hacia adelante;

el ápice del tubo se dilata ligeramente en su borde; apodema eyaculador li-

geramente más corto que el largo de la funda, expandido en su parte posterior

y con definido pedicelo de cerca de un-tercio de su largo total; pene casi tan

largo como la funda, algo más angosto y en general manteniendo la forma

de ésta (fig. 94).

L. frezieri Artigas.

Furca en forma de Y, con brazos gruesos, expandidos en el pre-ápice,

ambos convergen en la base, formando una V; proceso basal, dos-tercios el

largo de los brazos. Ducto común, poco definido; tres ductos expulsores, sólo

ligeramente más gruesos en la base y claramente engrosados en la zona de las

válvulas; ductos capsulares aproximadamente de la mitad del grueso de los

ductos expulsores y seis veces más largo que éstos, su grosor es uniforme,

excepto en el ápice, que se ensanchan hasta formar las grandes cápsulas;

cápsulas globosas, dos y media veces más largas que anchas, atenuadas en el

ápice donde hay un pequeño proceso tubular recurvado (fig. 96) — prep.

micr. NO 68. Funda del pene corta y alta, bruscamente atenuada en el ápice,

formando un tubo, ligeramente sinuoso, pero francamente dirigido hacia

adelante; apodema eyaculador cuatro-quintos del largo de la funda, ensanchada

en el extremo y con un pedicelo de un-cuarto del largo total; pene algo más

corto que la funda y más angosto, claramente conectado al tubo apical y man-

teniendo en líneas generales la forma de la funda (fig. 95).

OBSERVACIONES. Las especies estudiadas de este género (el material

de balmacedensis es muy escaso) presentan un indudable plan común, especial-

mente en los ductos y en las cápsulas; éstas son únicas entre todo el material

estudiado; su gran volumen comparado con el resto de la estructura es muy

característico, ayudando a enfatizar este carácter la presencia del pequeño

proceso tubular apical que no encontramos en otras especies de cápsulas glo-

bosas, excepto en las especies de Stizolestes, siendo éstas claramente dife-

rentes. Las furcas de ambas especies presentan diferencias dentro de un plan

general, principalmente en la formación de los brazos. Las fundas de los penes

se muestran diferentes, dentro del plan general, especialmente por la dirección

del tubo apical. En algunos aspectos la funda del pene coincide con la forma

de la funda de Rhadinosoma calderense.

PA, 0 E

Lycomyia Bigot

Una especie (Chile): germainú Bigot.

L. germainii Bigot.

Furca liriforme, de brazos largos, atenuados en el extremo, en la base

más gruesos; proceso basal corto, el borde posterior irregular, poco quitinizado,

de aspecto membranoso. Ducto común, largo y destacado, formando en el

ápice una cámara semi-esférica, de donde nacen separadamente los tres ductos

expulsores; ductos expulsores cortos, de paredes notablemente rugosas en

forma de acordeón, claramente dispuestas para una función de bomba; los

ductos expulsores se atenúan suavemente hacia el ápice sin engrosarse en la

zona correspondiente a las válvulas; ductos capsulares, dos y media veces el

largo de los ductos expulsores, de grosor uniforme, semejante al del ápice

de éstos; el ánima de estos conductos presenta un ligero ensanchamiento

próximo a su conexión con las válvulas; cápsulas tubiformes gruesas, tres

y media veces el largo de los ductos expulsores y capsulares juntos, su ancho

mayor es igual a tres veces el ancho medio de los ductos capsulares; el ápice

de las cápsulas es atenuado, terminando en un tubo delgado de consistencia

distinta al de las cápsulas (fig. 97) — prep. micr. NQ0 38. Funda del pene

sencilla, fuertemente atenuada hacia el ápice, con suaves sinuosidades,

terminando en punta; apodema eyaculador en forma de abanico, bastante

amplio en su parte posterior, el pedicelo es corto y grueso; pene casi tan

largo como la funda, ligeramente más angosto que ella en la parte basal y

en general de forma similar a ésta, en el extremo se conecta al ápice de la

funda (fig. 98).

OBSERVACIONES. El género Lycomyia ha constituído siempre un

taxon de difícil ubicación, se le ha considerado un grupo-puente entre la

sub-familia Asilinae y las otras sub-familias, habiéndose ubicado definitiva-

mente en la tribu Asilinae (correspondencia personal, Nelson Papavero). Este

género, de una sola especie, exclusivo de Chile, presenta una spermatheca

diferente a la de otros asílidos estudiados, especialmente por la forma del

ducto común y de los ductos expulsores, las cápsulas tampoco corresponden

al tipo dominante en la sub-familia Asilinae, cuales son las cápsulas de tipo

globoso, y se acercan más a las cápsulas de las sub-familias Dasypogoninae y

Laphrinae, donde varias especies presentan cápsulas tubulares. La furca, sin

embargo, corresponde al plan común de muchas furcas de Asilinae, igual cosa

sucede con la funda del pene, cuyo plan general es similar a otras especies de

Asilinae, entre ellas el género Lochyrus, Rhadinosoma y especialmente a

Stizolestes. El estudio de estas estructuras confirma su posición de grupo-puente

entre las sub-familias.

Mallophora Macquart

Ciento doce especies, una especie en Chile: freycineti Macquart.

El material chileno de este género es extraordinariamente escaso y no se ha

dispuesto de especímenes para disecciones.

Megametopon Artigas

Dos especies, ambas de Chile: ¿mmisericorde Artigas, occidentale (Philippi).

M. immisericorde Artigas.

Furca liriforme, de brazos largos y delgados, aparentemente algo más

gruesos en los tres-cuartos apicales; proceso basal moderado, aproximadamente

un-quinto del largo de los brazos. Ducto común, muy largo y grueso, constitu-

ye el elemento dominante en la spermatheca; tres ductos expulsores cortos,

un-sexto del largo del ducto común, ligeramente engrosados en el lugar de

las válvulas; ductos capsulares algo más angostos que los ductos expulsores

y dos veces más largos que éstos; cápsulas tubulares, gruesas, fuertemente ate-

nuadas en el ápice y recurvadas, terminando en una micro-cápsula (fig. 99) —

prep. micr. NO 92. Funda del pene larga y recta, con el borde ventral sinuoso,

en el ápice hay dos procesos apicales y dos procesos ventrales de tamaño

moderado, siendo más cortos los ventrales; apodema eyaculador en forma de

abanico, con pedicelo atenuado; pene cilíndrico, largo, casi tan largo como

la funda del pene, claramente conectado a su ápice (fig. 100).

M. occidentale (Philipp).

Furca liriforme, de brazos largos, sinuosos, de grosor uniforme; proceso

basal moderado, un-tercio del largo de los brazos. Ducto común muy largo y

grueso, constituye el elemento dominante de la spermatheca, dos y media

veces más largo que los ductos expulsores y capsulares juntos; tres ductos

expulsores cortos, ligeramente ensanchados en las válvulas, que son bien de-

finidas; ductos capsulares, el doble del largo de los ductos expulsores, con

un claro engrosamiento en su parte media; los ductos capsulares se conectan

a las cápsulas en un área pre-basal de la parte ventral, formando con ellas

un ángulo de 900; las cápsulas son tubulares, más gruesas en el centro y

fuertemente atenuadas en el ápice, formando un espiral de una vuelta; en

el extremo poseen una pequeña micro-cápsula (fig. 101) — prep. micr. N.os 41

1 ROA

y 65. Funda del pene alargada, fuertemente atenuada hacia el ápice, con el

borde dorsal y ventral sinuosos, ápice agudo, dirigido hacia adelante; apodema

eyaculador en forma de abanico con el borde posterior ornamentado, pedi-

celo corto y grueso, casi tan largo como la funda; pene ligeramente más corto

que la funda, similar en forma y claramente conectado al ápice (fig. 102).

OBSERVACIONES. Las especies de este género presentan un plan común

indudable. Se destaca el gran desarrollo del ducto común, situación muy poco

corriente en los asílidos chilenos; similar situación, aunque en menor grado,

se presenta en los géneros Rhadinosoma, Zoticus y Nestotes, siendo en estos

dos últimos más semejante. Así también, las cápsulas de Zoticus toconaoensis

se asemejan bastante a las de Megametopon immisericorde (ver conclusiones).

La furca presenta gran similitud, igual cosa sucede con la funda del pene, salvo

la estructura propia de] ápice, que constituye una diferencia interespecífica.

Las cápsulas presentan una diferencia notable, derivadas de la conexión de

los ductos capsulares a las cápsulas; la inserción pre-basal del ducto a la

cápsula en Megametopon occidentale, es distinto a cuanto se ha observado en

el resto de los asílidos chilenos.

Menexenus Artigas

Dos especies, ambas de Chile: concepcionensis (Bromley), veredus Artigas.

M. concepcionensis (Bromley).

Furca liriforme, de brazos largos y delgados, ligeramente engrosados en

el ápice; proceso basal moderado, de un-tercio del largo de los brazos. Ducto

común indefinido; tres ductos expulsores de grosor uniforme, sin ensancha-

miento visible en las válvulas; ductos capsulares, en su base tan gruesos como

los ductos expulsores, luego se atenúan hasta la mitad de su grosor, volviendo

a engrosarse suavemente en el ápice hasta formar las cápsulas, su longitud es

dos y media veces los ductos expulsores; cápsulas tubulares, alargadas, cuatro

veces más largas que anchas, de color claro, más claro que los ductos capsulares

(fig. 103) — prep. micr. NO 42. Funda del pene corta, alta en la base, brusca-

mente atenuada hacia el ápice hasta formar un corto tubo apical, sinuoso,

dirigido hacia adelante, algo expandido en el ápice; en el dorso hay un pro-

ceso ligeramente inclinado hacia adelante; apodema eyaculador muy grande,

casi dos veces el largo de la funda, ampliamente expandido en su parte pos-

terior y con un pedicelo fuertemente atenuado; pene casi la mitad de la

funda y menos de un-tercio de grueso que el ancho mayor de la funda; el

pene se conecta a la base del tubo apical (fig. 104).

OBSERVACIONES. Si bien esta estructura no presenta ningún elemento

claramente diferente a otras spermathecas, tampoco parece similar a ninguna

de ellas. La funda del pene recuerda a la funda de Lochyrus; sin embargo, las

spermathecae difieren grandemente. No se estudió la especie Menexenus veredus

Artigas, por falta de material.

Myaptex Hull

Cuatro especies, todas de Chile: brachyptera (Philippi), hermann: Hull,

vextllaria Artigas, virilis Artigas.

M. brachyptera (Philippi).

Furca liriforme, de brazos largos y delgados, ligeramente curvados hacia

afuera en el ápice, ápice agudo; proceso basal sub-rectangular, su ancho es

tres-cuartos la distancia entre la base de los brazos y su largo es algo menor

de un-tercio el largo de los brazos; en el centro de la rama horizontal de la

furca hay un proceso cilíndrico, alargado en dirección al ápice de los brazos,

su grosor es aproximadamente el doble del grosor de los brazos y su largo,

cerca de un-quinto el largo de éstos. Ducto común, indefinido; los dos ductos

expulsores y capsulares continuados, sin separación aparente, en la base li-

geramente engrosados por un corto trecho, en conjunto, dos veces más largos

que los brazos de la furca; válvulas indefinidas; estos ductos terminan en

una cápsula globosa, ligeramente oscurecida (fig. 110) — prep. micr. NQ 46.

Funda del pene, corta, alta en la base y bruscamente atenuada en la parte

dorsal hacia el ápice, el cual se prolonga en dos largos procesos dirigidos

hacia arriba, tan largos como tres veces el largo del cuerpo de la funda y

formando con ésta un ángulo aproximado de 900; apodema eyacualor peque-

ño, en forma de abanico, cerca de tres-cuartos del largo total de la funda,

con un pedicelo delgado; pene más corto que la funda, ligeramente más del-

gado y aproximadamente de la misma forma, su ápice está conectado a la base

de los dos procesos apicales (fig. 109).

M. hermanni Hull.

Furca liriforme, de largos brazos, suavemente atenuados hacia el ápice,

donde se curvan levemente hacia el interior; en la base los brazos forman un

amplio arco de donde emerge un proceso cilíndrico, aproximadamente de un-

sexto del largo de los brazos de la furca; proceso basal sub-rectangular, su

ancho medio es la mitad del ancho entre la mayor separación entre

los brazos, su largo es ligeramente inferior a un-tercio del largo de éstos.

Ducto común corto, el doble del grosor de la base de los ductos expulsores;

dos ductos expulsores, ligeramente atenuados hacia el ápice, conectados suave-

mente a los ductos capsulares, que son aproximadamente la mitad del grueso

y una y media vez el largo de éstos, no hay engrosamiento visible en la zona

de las válvulas y éstas aparecen indefinibles; cápsulas globosas, ligeramente

alargadas, su largo es ligeramente menor que dos veces su ancho (fig. 107) —

prep. micr. NQ 89, Funda del pene corta y alta, bruscamente atenuada en

el ápice, donde se proyectan dos procesos apicales, cinco veces más largos que

el largo de la funda, atenuados en el ápice hasta formar un frágil filamento;

estos procesos forman en su base un ángulo de 700 con el eje de la funda y

continúan recurvándose suavemente hacia atrás; apodema eyaculador pequeño,

algo expandido en la parte posterior y con un frágil pedicelo; pene más

pequeño que la funda, siguiendo aproximadamente su forma y conectado en

su ápice a la base de los procesos apicales (fig. 108).

M. vexillaria Artigas.

Furca liriforme, brazos delgados, engrosados en la base y ligeramente

curvados hacia el interior en el ápice; en la unión de los dos brazos hay

un proceso ancho de bordes irregulares; proceso basal sub-rectangular, cerca

de un-cuarto el largo de los brazos y su ancho medio es cerca de tres-cuartos

del ancho de la máxima separación entre los brazos. Ducto común indefi-

nido; dos ductos expulsores que se continúan sin separación definida en los

ductos capsulares, los cuales son ligeramente más angostos que los anteriores,

el largo total de ambos es cerca de dos veces el largo de los brazos; cápsulas

globosas, oscurecidas en la mitad apical, destacándose la diferencia entre la

zona basal y la zona apical (fig. 111) — prep. micr. NO 88. Funda del pene

de cuerpo corto y alto, cerca de dos veces más alto que largo, bruscamente

atenuada hacia el ápice, donde nacen dos largos procesos apicales, cerca de

ocho veces más largos que el largo de la funda; estos procesos al nacer forman

un ángulo de 300 con el eje de la funda y luego se recurvan suavemente

hacia atrás, en el ápice terminan en un flagelo de longitud similar a una

y media vez el mayor alto de la funda; apodema eyaculador grande, en forma

de abanico, con algunas ornamentaciones concéntricas, bruscamente atenuadas

hacia el ápice formando un pedicelo cónico; pene ligeramente menor que el

cuerpo de la funda y aproximadamente de su misma forma, el ápice se conecta

a la base de los procesos apicales (fig. 112).

M. virilis Artigas.

Furca liriforme, brazos delgados, de grosor uniforme, curvados hacia afuera

en el ápice, formando un ángulo de 900; proceso basal largo, casi tres-cuartos

el largo de los brazos y su grosor es igual a un-cuarto de la mayor separación

entre los brazos. Ducto común indefinido; dos ductos expulsores continuados

en los ductos capsulares, sin separación visible, manteniendo ambos apro-

ximadamente el mismo grosor; válvulas indefinidas; cápsulas globosas, oscu-

recidas ligeramente más oscuras hacia el ápice (fig. 105) — prep. micr. NO 62.

Funda del pene corta, su largo es una y media vez su alto, bruscamente

atenuada en su parte dorsal, en el ápice se continúa en dos largos procesos

apicales de cerca de cinco veces el largo de la funda, éstos en su base forman

un ángulo de 500 con el eje de la funda, recurvándose luego hacia atrás y

en seguida hacia adelante formando una S; el ápice es flagelado; apodema

eyaculador en forma de abanico con ornamentaciones concéntricas, brusca-

mente atenuado para formar el pedicelo; pene tan largo como la funda y

aproximadamente de la misma forma, su ápice se conecta a la base de los

procesos apicales (fig. 106).

OBSERVACIONES. Pocos géneros de los estudiados presentan un plan

general de estas estructuras tan definido y constante. La existencia de dos

elementos capsulares y sus ductos; la ausencia o indefinición de las válvulas

y la falta de separación entre los ductos expulsores y capsulares unidos a un

ducto común indefinido, son caracteres que solamenie encontramos con gran

semejanza en Eccritosta, en donde hay un gran desarrollo de los ductos ex-

pulsores y de las válvulas. La furca presenta un proceso central existente en

todas las especies, excepto en virilis, lo que pudiera deberse a un accidente

en la manipulación durante la disección, si así no fuera, esta especie sería

la excepción respecto a este carácter. Las fundas de pene mantienen también

un plan común notable, variando en la longitud y dirección de los procesos

apicales y en la estructura de su ápice; también hay variaciones en los apo-

demas eyaculadores, aunque estas estructuras constituyen un carácter muy

poo» valedero por su posterior crecimiento. La funda del pene, especialmente

en brachyptera, es próxima en forma a la de Eccritosta, pero carece de las

crestas dorsales presentes en los procesos apicales.

Nesiotes Artigas

Una especie (Chile): chiloensis Artigas.

N. chiloensis Artigas.

Furca liriforme, brazos suavemente atenuados hacia el ápice, los cuales

se curvan levemente hacia afuera, en su parte basal, los brazos se unen for-

fando un amplio semicírculo; proceso basal de longitud inferior a la mitad

del largo de los brazos y su ancho medio aproximadamente dos veces el ancho

medio de los brazos, en su extremo basal se dilata suavemente. Ducto común

largo, tan largo como los ductos expulsores y capsulares juntos; tres ductos

expulsores cortos, de color uniforme, en su ápice las válvulas pequeñas, pero

definidas; ductos capsulares de grosor uniforme, cinco veces más largos que

los ductos expulsores y sólo ligeramente más angostos que éstos; cápsulas

tubulares alargadas, aproximadamente siete veces más largas que anchas, li-

geramente atenuadas en el ápice (fig. 113) — prep. micr. NO 44, Por escasez

de material no se estudió la funda del pene.

OBSERVACIONES. A pesar de disponer de un solo individuo hembra

para la disección, ésta muestra que el género por su spermatheca, es diferente

a otros géneros estudiados. El largo ducto común está presente en Rhadinosoma,

Zoticus y Megametopon, pero la combinación de caracteres, especialmente las

cápsulas, separan claramente a este género.

Nomomyia Artigas.

Dos especies, ambas de Chile: ¿vetteac Artigas, murina (Philippi).

N. ivetteae Artigas.

Furca liriforme, de brazos de grosor uniforme, sinuosos, levemente do-

blados hacia afuera en el ápice, en la base muy separados, casi tan separados

como el largo del brazo; proceso basal se une ampliamente al tramo horizontal

de la furca, atenuándose hacia la mitad y expandiéndose ligeramente en su

extremo; largo del apodema ligeramnte inferior al de los brazos. Ducto común

largo y grueso, una-y-media vez el largo de los ductos expulsores; tres ductos

expulsores engrosados en la base y en el ápice en la zona de las válvulas;

ductos capsulares de grosor uniforme, tan largo como los ductos expulsores

y tan gruesos como la parte más delgada de éstos; cápsulas tubulares atenuadas

en el ápice, enrolladas en espiral de una-y-media a dos vueltas; la cápsula

central es visiblemente mayor que las laterales (fig. 114) — prep. micr. NO 69.

Funda del pene alargada, angosta, con un proceso dorsal y dos procesos ven-

trales en el ápice, el proceso dorsal más corto; apodema eyaculador alargado;

ligeramente expandido en la parte posterior, presentando en el borde ondu-

laciones convergentes, el pedicelo es angosto y compromete la mitad del apo-

dema; pene más corto que la funda y de forma similar, alcanza el ápice de

la funda ligeramente antes del nacimiento de los procesos apicales (fig. 115).

N. murina (Philippi).

Furca liriforme, los brazos visiblemente ensanchados en la base, formando

en conjunto el proceso basal. Ducto común ancho, de largo similar al largo

de los ductos expulsores; tres ductos expulsores cortos, ligeramente ensancha-

dos en la zona de las váuvulas y con abundantes procesos de inserción mus-

cular, spiniformes, en la mitad apical; ductos capsulares oscuros, tan gruesos

como el grosor en la zona de las válvulas y dos veces más largos que los ductos

expulsores; se continúan sin separación aparente en las cápsulas, que son

ligeramente más gruesas que ellos y forman un espiral de una y media vueltas;

aparentemente las tres cápsulas son de tamaño similar (fig. 116) — prep

micr. NO 43, Funda del pene larga y angosta, doblada hacia arriba y luego

hacia adelante a partir de la mitad anterior, con dos procesos apicales ven-

trales y una pequeña proyección dorso-apical; apodema eyaculador moderado,

expandido en la parte posterior y con un delgado pedicelo que compromete

tres-cuartos de su largo total; pene más corto que la funda, de forma simi

lar a ésta, claramente comunicado con el ápice (fig. 117).

OBSERVACIONES. Las dos especies del género muestran un plan

común similar pero con importantes variaciones. La longitud del ducto común

y la presencia de procesos de inserción muscular en murina, así como una

cápsula central de mayor tamaño en ?tvetteae, separan estas dos especies.

Las furcas y las fundas de pene, por otro lado, aseguran la próxima relación

de ambas especies.

Philonerax Bromley

Dos especies, ambas de Chile: mucidus (Walker), chilechicoensis Artigas.

Ph. chilechicoensis Artigas.

Furca de brazos muy cortos y agudos, divergentes, el proceso basal grande,

formando la mayor parte de la furca. Ducto común ancho y definido, cerca

de la mitad del largo de los ductos expulsores; tres ductos expulsores gruesos

en más de la mitad basal, el resto de cerca de la mitad del grueso, ensancha-

dos en el extremo correspondiente a la ubicación de las válvulas; la parte del-

gada de los ductos expulsores es más oscura y contiene pequeños procesos en

toda su extensión, posiblemente relacionados con la inserción muscular; ductos

capsulares largos, de grosor uniforme, aproximadamente de la mitad del grosor

de la zona de las válvulas y tan largos como diez veces el largo de los ductos

expulsores; cápsulas globosas, ligeramente atenuadas en el ápice, oscurecidas

AE 1 AQ

en los tres-cuartos apicales (fig. 120) — prep. micr. NO 93, Funda del pene

angosta, sub-cilíndrica, con tres delgados procesos apicales rectos, ligeramente

más largo que el cuerpo de la funda y dirigidos hacia adelante; apodema

eyaculador tan largo como el cuerpo de la funda, expandido en la parte pos-

terior y suavemente atenuado anteriormente para formar el pedicelo; pene

algo más corto que la funda, casi del mismo grosor, su ápice se conecta a

la base de los procesos apicales (fig. 121).

OBSERVACIONES. El plan general de esta especie recuerda en mu-

chos aspectos el plan general de Lochmorhyrchus, especialmente por la forma

de la funda del pene y los ductos y cápsulas de la spermatheca; la semejanza

es notable en estos aspectos entre Philonerax chilechicoensis y Lochmorhynchus

borrori. La diferencia fundamental entre estos géneros lo constituyen las furcas,

especialmente en la longitud de los brazos, muy desarrollados en Lochmor-

hynchus y casi inexistentes en Philonerax. Ph. mucidus es una especie suma-

mente escasa y no se ha dispuesto de individuos para su disección.

Rhadinosoma Artigas

Una especie (Chile): calderense Artigas.

Rh. calderense Artigas.

Furca en forma de Y con brazos cortos y agudos; proceso basal dos veces

más largo que los brazos y tan anchos como la mitad del largo de los brazos;

en el interior de la rama horizontal de la furca nace un pequeño proceso

tuberculiforme alargado, más oscuro que el resto de la furca. Ducto común

largo, grueso, cerca de dos veces el largo de los ductos expulsores; tres ductos

expu'sores suavemente engrosados hacia el ápice, donde se ubican las vál-

vulas; ductos capsulares de color uniforme, tan gruesos como la parte

delgada de los ductos expulsores y el doble del largo de éstos; cápsulas

globosas, pequeñas, similares en tamaño, lo ductos capsulares insertan en la

base de las cápsulas formando con ellas un ángulo de 900 (fig. 119) — prep.

micr. NO 70. Funda del pene en la base atenuada hacia el ápice hasta formar

un tubo apical, expandido en su borde, especialmente en la parte ventral;

largo total de la funda dos veces su alto; apodema eyaculador muy grande

y largo, una y un-cuarto vez más largo que la funda, expandido en su parte

posterior en forma de abanico y atenuado hacia el extremo formando un

pedicelo de curso sinuoso que compromete la mitad de su largo; pene muy

corto, casi un-tercio del largo total de la fumda, prácticamente localizado sólo

en el tubo apical de ésta, su extremo se conecta al ápice de la funda (fig. 118).

OBSERVACIONES. Las estructuras de esta especie única en el género

muestran que éste está separado de otros géneros chilenos, tanto las cápsulas y

su inserción con los ductos capsulares y la furca, junto al largo ducto común,

forman un modelo diferente. La sencilla funda del pene, sin embargo, recuerda

a Lochyrus frezieri y a Lochyrus crassus, pero en Rh. calderense es notable

la pequeñez del pene, situación que no se presenta en Lochyrus.

Stizolestes Hull

Ocho especies, todas de Chile: aureomaculatus (Bromley), atribarbis Artigas,

eritrichus (Philippi), gay? (Macquart), may? (Edwards), modellus (Bromley),

nigriventris (Philippi), pamponeroides (Edwards).

S. aureomaculatus (Bromley).

Furca liriforme, con brazos delgados, fuertemente engrosados en la base,

en el tercio apical se doblan suavemente hacia el interior para luego curvar

el ápice hacia afuera; proceso basal corto y ancho, casi tan ancho como alto,

ligeramente más angosto en su base; en la fusión de los dos brazos y el proceso

basal hay un proceso en forma de quilla más quitinizado que el resto. Ducto

común largo, tres veces más largo que los ductos expulsores; tres ductos ex-

pulsores cortos, ensanchados en el ápice, donde se ubican las válvulas; ductos

capsulares gruesos, tan gruesos como los ductos expulsores y tan largos compo

dos veces el largo del ducto común; cápsulas globosas, en forma de limón, con

una pequeña microcápsula tubiforme en el ápice (fig. 122) — prep. micr. NO 71,

Funda del pene dos veces más larga que alta, fuertemente atenuada hacia el

ápice, terminando en un extremo casi agudo; apodema eyaculador, tres-cuartos

del largo de la funda, expandido en la parte posterior y atenuada hacia el

ápice formando un pedicelo delgado y levemente sigmoídeo; pene ligera-

mente más corto que la funda y aproximadamente similar, el extremo se

conecta al ápice de la funda (fig. 123).

S. gayi (Macquart).

Furca liriforme, con los brazos delgados y atenuados hacia el ápice, los

cuales se curvan suavemente hacia el interior; largo del proceso basal ligera-

mente menor que el largo de los brazos y su ancho medio cerca de la mitad

de la distancia mayor entre los brazos. Ducto común, moderado, casi tan

largo como los ductos expulsores; tres ductos expulsores ligeramente atenuados

hacia el ápice donde se definen bien las válvulas; ductos capsulares de grosor

4gí

uniforme, tan gruesos como la parte más angosta de los ductos expulsores y

casi dos veces su largo; cápsulas en forma de limón con una microcápsula

alargada en forma de tubo de aproximadamente un-cuarto del largo total

de la cápsula (fig. 127) — prep. micr. NO 45. Funda del pene alta en la base,

ligeramente más larga que alta, fuertemente atenuada en la parte dorsal hasta

formarse el tramo apical angosto que compromete casi dos-tercios del total de

la funda, ápice agudo; apodema eyaculador de casi tres-cuartos del largo total

de la funda, expandido moderadamente en la parte posterior y con un pedi-

celo más bien grueso que compromete dos-tercios de su largo total: el pene

no se distingue debido a la densa esclerotización de la funda (fig. 126).

S. mayi (Edwards).

Furca liriforme, de brazos delgados atenuados en el ápice; proceso basal

tan largo como la mitad del largo de los brazos, su ancho medio algo menor

que la mitad de la distancia mayor entre los brazos; ducto común corto,

menos de un-tercio del largo de los ductos expulsores; tres ductos expulsores

delgados, ensanchados en la zona de las válvulas, las que están bien definidas;

ductos capsulares de grosor uniforme, tan gruesos como el gnosor medio de

los ductos expulsores y dos y media veces el largo de éstos; cápsulas globosas,

suavemente atenuadas en el ápice, dos veces más largas que anchas, con una

microcápsula tubular en el ápice de un-quinto del largo de la cápsula (fig. 125)

— prep. micr. NO 78. Funda del pene con la parte basal ligeramente más baja

que el largo total, bruscamente atenuadas hacia el ápice, formando con los

tres-cuartos apicales un cuerpo alargado, sub-sigmoideo, ápice romo; apodema

eyaculador tan largo como el alto de la base de la funda, suavemente atenuada

hacia el extremo, formando un ancho pedicelo; pene no observable por la

obscuridad de la funda (fig. 124).

S. modellus (Bromley).

Furca liriforme, de brazos delgados y agudos; proceso basal corto, casi

un-quinto del largo de los brazos y tan ancho como el alto. En el lugar de

reunión de los brazos y el proceso basal hay una proyección en forma de

quilla visiblemente más esclerosada que el resto. Ducto común tan largo

como los ductos expulsores; tres ductos expulsores de grosor uniforme, ligera-

mente dilatados en el lugar de las válvulas; ductos capsulares de grosor uni-

forme, tan gruesos como los ductos expulsores y cuatro veces más largos que

éstos; cápsulas en forma de limón con una pequeña microcápsula en el ápice,

de cerca de un-séptimo del largo de ésta (fig. 128) — prep. micr. NQ 75. Funda

del pene similar a la de $. gayi (fig. 129).

S. nigriventris (Philippi).

Furca liriforme, con brazos muy delgados, algo más gruesos en la base;

proceso basal ligeramente menor que el largo de los brazos y bruscamente

ensanchados en la parte posterior formando casi un disco, el cual está menos

esclerosado que la base del proceso. Ducto común corto y ancho; tres ductos

expulsores, delgados, de grosor uniforme, dos y media veces más largo que

el ducto común, engrosados en el ápice en el lugar de las válvulas; ductos

capsulares en su base, tan gruesos como el grosor medio de los ductos ex-

pulsores, pero engrosando suavemente hacia las cápsulas, su longitud es dos

y media veces el largo de los ductos expulsores; cápsulas en forma de limón

con una microcápsula en el ápice de cerca de un-quinto del largo de la

cápsula (fig. 131) — prep. micr. NO 76. Funda del pene similar a la de

S. aureomaculatus (fig. 130).

S. pamponeroides (Edwards).

Furca liriforme, brazos delgados y agudos; proceso basal dos veces el

largo de los brazos y su ancho medio igual a la mitad de la distancia mayor

entre los brazos; a partir de la fusión de los brazos y continuando a lo

largo de la línea media del proceso basal hay una quilla baja, fuertemente

esclerosada, extendida casi a todo el largo del proceso. Ducto común corto y

grueso, pero una y media vez más largo que los ductos expulsores; tres ductos

expulsores muy cortos, dilatados en el área de las válvulas; ductos capsulares

en su mayor parte tan gruesos como los ductos expulsores y siste veces más

largos que éstos; los ductos capsulares se engrosan en su cuarto apical para

unirse suavemente a las cápsulas; cápsulas en forma de limón, con una

microcápsula en el ápice de un-quinto del largo total de las cápsulas (fig. 133)

—prep. micr. N9 73. Funda del pene similar a la S. modellus y S. gayi (fig. 132).

OBSERVACIONES. Las especies de este género presentan gran similitud

en las estructuras estudiadas, formando indudablemente un grupo de especies

muy próximas y claramente separadas de otros géneros. Entre ellas las

diferencias interespecíficas son proporcionadas por la relación de longitud

entre los ductos y algunas expresiones de la furca. Las fundas de los penes

presentan algunas variaciones que son constantes dentro de la especie, sin

2 1

embargo, en otras como entre gay, modellus, mayi y pamponeroides, las di-

ferencias son muy débiles y cabe preguntarse si acaso no hubiesen más di-

ferencias entre individuos de la misma especie que entre individuos de las

especies mencionadas.

Por escasez de material no se trabajaron las especies atribarbis y eritrichus.

El género Stizolestes, en lo referente a las spermathecae y funda del

pene, mantiene la misma dificultad que presenta estudiar el grupo a través

de los caracteres morfológicos corporales externos.

Zoticus Artigas

Una especie (Chile): toconaoensis Artigas.

Z. toconaoensis Artigas.

Furca liriforme de brazos largos, uniformemente delgados, más separados

entre sí en la parte media; proceso basal corto y poco esclerosado. Ducto

común largo, más de dos veces el largo de los ductos expulsores y capsulares

juntos; tres ductos expulsores y capsulares sin separación notoria, de igual

grosor; cápsulas tubulares, fuertemente atenuadas en el ápice y en la base,

recurvadas ventralmente, y algo más largas que los ductos expulsores y

capsulares juntos (fig. 135) — prep. micr. NO 72. Funda del pene alargada,

atenuada hacia el ápice, hasta terminar en una suerte de tubo» de curso

ligeramente sigmoídeo; cerca de la mitad de la parte ventral, hay un pe-

queño proceso dirigido hacia atrás; apodema eyaculador tan largo como la

mitad de la funda, moderadamente expandido en su parte posterior y ate-

nuado hacia el ápice formando un pedicelo que compromete algo más de

la mitad de su largo total; pene casi tan largo como la funda, pero más

angosto, siguiendo aproximadamente la forma de ésta, su ápice se conecta

al tubo apical de la funda (fig. 134).

OBSERVACIONES. El plan general de la spermatheca es diferente al

de casi todos los asílidos chilenos estudiados, sin embargo, ciertas formas

parciales como la gran longitud del ducto común y en alguna forma el

aspecto de las cápsulas y posiblemente también la furca, recuerdan a la

spermatheca de Megometopon immisericorde, sin embargo, entre las fundas

de los penes de ambas especies hay una apreciable diferencia. Ambos géneros,

Megametopon y Zoticus, demuestran ser muy próximos (ver conclusiones).

EAS SPERMATHECAE Y FUNDAS DE PENE COMO FUENTE

DE INFORMACION PARA EL PROCESAMIENTO DE

LOS ASILIDOS CHILENOS MEDIANTE LA

TAXONOMIA NUMERICA

En el capítulo anterior se tratan estas estructuras de acuerdo a la sis-

temática clásica, donde el subjetivismo del autor, unido a impresiones ba-

sadas en su experiencia personal en el grupo, le permiten proponer en forma

autorizada modificaciones para una mejor ordenación de los taxa. En principio

el sistemático y el computador trabajan en forma similar, introduciendo pa-

rámetros en su memoria; la persona introduce en su memoria miles de pa-

rámetros con sólo mirar una figura (toma una impresión total), mientras que

el computador sólo puede acumular los parámetros que se le entregan, los

cuales son generalmente más reducidos en número (nadie podría reproducir

exactamente una figura sólo en base a los datos que le proporcionan al com-

putador). La capacidad de la persona para hacer una síntesis con los datos

con que ha abastecido su memoria es limitada, olvida muchos de ellos y

confunde otros; además, consciente o inconscientemente adjudica a los pará-

metros distintos niveles de importancia, dando a unos mayor peso que a

otros, lo que es necesariamente subjetivo y variará de un investigador a otro

cuando trabajen en un mismo problema, pudiendo incluso llegar a resultados

distintos. El computador recibe menor información, pero la usa toda y está

exento de subjetivismo.

Con el objeto de comparar ambos sistemas (taxonomía clásica y taxonomía

numérica) se han procesado, en la forma que se indica más adelante, los

siguientes caracteres correspondientes a las estructuras mencionadas.

CARACTERES USADOS

SPERMATHECA (Fig. 1).

A largo comprendido entre la base del proceso basal y el punto más bajo

interno de la furca.

B alto de los brazos de la furca.

C ancho de la furca a la altura de la conexión de los brazos con el tramo

horizontal.

D largo del ducto común.

E largo de los ductos expulsores.

F largo de los ductos capsulares más el largo de las cápsulas.

— 53 —=

G largo de las cápsulas.

H ancho máximo de las cápsulas.

I forma general de la furca expresada en 10 estados de acuerdo a las

siguientes furcas-tipo:

1 Fig. 103 65 Fig. 60

2 Fig. 26 il Figs. 66 y 68

3 Fig. 8 8 Fig, 12

4 Fig. 29 9 Fig. 89

5 Figs. 23 y 29 10 Fig. 120

J forma general de las cápsulas expresadas en 5 estados de acuerdo a

las siguientes cápsulas-tipo:

l Fig. 41 4 Fig. 91

2 Ejg-13 5 Fig. 81

3 Fig. 30

K existencia o ausencia de microcápsula en el ápice de las cápsulas.

l con microcápsula (tipo Fig. 96)

2 sin microcápsula (tipo Fig. 79)

L posición de las cápsulas.

1 forma un espiral (tipo Fig. 46)

2 dobladas (tipo Fig. 69)

3 rectas O sin una posición

forzada (tipo Figs. 89, 73)

M dirección de los brazos de la furca.

] divergentes (tipo Fig. 23)

2 rectos ¡y paralelos (tipo Fig. 77)

Ea) convergentes (tipo Fig. 128)

N conformación de los brazos de la furca.

] gruesos, truncos y cortos (tipo Fig. 8)

2 gruesos, truncos, de longitud

mediana (tipo Fig. 83)

3 delgados, cortos y agudos (tipo Fig. 60)

4 delgados y largos (tipo Fig. 107)

5 cortos, gruesos y agudos (tipo Fig. 120)

O válvulas.

1 bien definidas (tipo Fig. 58)

2 ausentes (tipo Fig. 111)

3 poco definidas (tipo Fig. 26)

P número de cápsulas con sus correspondientes ductos.

1 dos (tipo Fig. 83)

2 tres (tipo Fig. 81)

Q uniformidad de los elementos capsulares.

1 cápsulas y ductos similares (tipo Fig. 66)

2 cápsula central más grande y

ducto más largo (tipo Fig. 30)

R grueso de los ductos expulsores en relación a los ductos capsulares.

] ductos expulsores similares a

los ductos capsulares (tipo Fig. 25)

2 ductos expulsores más gruesos

que los capsulares (tipo Fig. 63)

3 Ductos expulsores ligeramente

más gruesos que los capsulares (tipo Fig. 60)

4 ductos expulsores más delgados

que los capsulares (tipo Fig. 5)

S proceso basal de la furca.

1 ancho y corto (tipo Fig. 19)

2 ancho y largo (tipo Fig. 83)

3 delgado (tipo Fig. 25)

4 ausente (tipo Fig. 5)

E interior de la base de los brazos umidos al tramo horizontal.

] en V (tipo Fig. 25)

2 en cuadro (tipo Fig. 85)

3 en U (tipo Fig. 26)

U forma del ducto capsular.

l de grueso uniforme, muy di-

ferente a la cápsula (tipo Fig. 91)

2 engrosada hacia el ápice for-

mando suavemente la base de

la cápsula (tipo Fig. 81)

3 de grosor similar a la cápsula,

aparentemente no hay cápsula

o ésta no está diferenciada. (tipo Fig. 15)

v ápice de los brazos de la furca

1 rectos (tipo Fig. 91)

2 convergentes (tipo Fig. 128)

3 divergentes (tipo Fig. 79)

W tubérculo o quilla en el tramo horizontal de la furca.

l con tubérculo (tipo Fig. 61)

2 con quilla (tipo Fig. 133)

E) sin tubérculo ni quilla (tipo Fig. 89)

XxX ducto común.

l dividido antes de los ductos

expulsores (tipo Fig. 44)

Ze un solo ducto (tipo Fig. 45)

Los caracteres A—H son medidas en centímetros tomadas con planímetro

sobre los dibujos; las I—X son apreciaciones subjetivas. A—H se usan sólo

como razones (ej. A/B, A/C, A/D, etc.), el resto de los caracteres se usan

directamente .En total se procesan 42 guarismos.

Los caracteres usados son los proporcionados por una visión bidimen-

sional de la estructura, situación aceptada porque permite el uso de la foto-

grafía de preparaciones permanentes a una misma escala, aunque ello ne-

cesariamente significa no usar algunos caracteres como grueso de la furca,

altura de las quillas, etc. y efectuar las mediciones sobre partes ligeramente

distorsionadas por efectos del montaje, como ancho de las cápsulas y ductos

expulsores.

FUNDA DEL PENE.

A largo del apodema eyaculador.

B ancho máximo del apodema eyaculador.

Cc largo total de la funda del pene.

D ancho medio de la funda del pene (cuerpo).

E largo del pene.

E ápice de la funda del pene.

l ápice de una rama, delgada y

simple (tipo Fig. 126)

2 ápice de una rama, delgada y

expandida (tipo Fig. 95)

3 ápice no simple (tipo Fig. 80)

G procesos apicales.

] laterales (tipo Fig. 11)

2 dorsales (tipo Fig. 17)

3 ventrales (tipo Fig. 51)

4 dorsales y ventrales (tipo Fig. 16)

5 sin procesos apicales (tipo Fig. 55)

H ramas formando la mitad apical de la funda (largos procesos apicales

dirigidos hacia adelante).

l dos ramas (tipo Fig. 108)

2 tres ramas (tipo Fig. 90)

3 cuatro ramas (tipo Fig. 65)

4 mitad apical no ramificada (tipo Fig. 98)

I dorso de la funda del pene.

] liso (tipo Fog. 7)

2 ornamentado (tipo Fig. 16)

ii procesos ventrales, ubicación y dirección.

1 en la mitad apical; hacia

adelante (tipo Fig. 20)

2 en la mitad apical; hacia

atrás (tipo Fig. 134)

en la mitad basal; hacia

adelante

en la mitad basal; hacia

atrás

sin procesos ventrales

dorso de la funda.

19)

forma general

]

cerrada en la parte dorsal

abierta en la parte dorsal

(tipo Fig. 11)

(tipo

Fig.

27)

28)

59)

74)

de la funda de acuerdo a los tipos indicados.

tipo Fig. 129 4

tipo Fig. 16 5

tipo Fig. 109 6

mitad apical de la funda.

TD 0 0.NyN-

tubo simple

dos procesos apicales largos

tres procesos apicales largos

cuatro procesos apicales largos

varios procesos apicales cortos

tipo Fig.

(tipo

tipo Pronomopsis, Figs. 71 y 74.

relación del largo de la funda con el pene.

[No]

pene menor que la mitad de

la funda

pene ligeramente más corto

que la funda

ambos de similar longitud

pene más largo que la funda

(tipo

Fig.

59)

109)

90)

65)

80)

90)

109)

102)

59).

Los caracteres A—E son medidas y F—N estados (clasificación subjetiva)

de los caracteres. Se emplearon sólo los datos proporcionados por el dibujo

bidimensional (vista lateral de la funda), perdiéndose los datos relacionados

con vistas dorsales, ventrales y posteriores. Los esquemas de las fundas,

rrespondientes a las medidas.

A Aa

tomado de un trabajo anterior del autor (Artigas, 1970), no están a escala

uniforme; se han usado en el procesamiento las razones de las cifras co-

El total de los guarismos procesados para las fundas es de 19.

PROGRAMACION

Los programas tueron desarrollados en Fortram II-D por el Sr. Miguel

Ramírez H., del Centro de Ciencias de Computación e Información de la

Universidad de Concepción, fusionando dos métodos: a) coeficientes de simi-

litud (modificado en parte) de Rogers, D. J. y T. T. Tanimoto, 1960, y

b) algoritmo de agrupación (clustering) de van Rijsbergen, C. J., 1970. El

Sr. Ramírez supervisó personalmente el procesamiento de los datos, por ello

y por sus mumerosas y útiles sugerencias, el autor deja constancia de sus sin-

ceros agradecimientos.

Los programas fueron procesados en un computador IBM 1620 con 40.000

posiciones de memoria.

DISCUSION DE LOS DENDROGRAMAS

Los dendrogramas formados con los datos obtenidos del procesamiento de

las fundas de pene, spermathecae, y fundas de pene y spermathecae en con-

junto, se presentan en las figs. 136-138. A objeto de adecuar las razones obte-

nidas de los caracteres métricos a las necesidades del cálculo del coefi-

ciente de disimilitud usado, fue necesario someterlos a un proceso de agru-

pación. Se realizaron dos agrupaciones, cuyos resultados produjeron dendro-

gramas levemente diferentes. Se usó un algoritmo que produjo grupos en

los cuales la diferencia entre la menor y la mayor de las razones comprendidas

es inferior al 509%, del valor de la menor razón ya mencionada. Esta diferencia

podría llegar hasta 55% en caso que las razones contiguas al grupo( en orden

de valor) estuvieran más cercanas a éste que al próximo grupo. El mismo

algoritmo se procesó también usando un 20% y un 25% como límites en

yes del 507% y el 55%.

Los dendrogramas presentados y discutidos corresponden al procesamiento

considerando las razones agrupadas por diferencias de 50%.

El nombre de las especies corresponde al usado en Artigas 1970, y han

sido agrupadas en géneros hasta donde cada dendrograma lo permite. Las

modificaciones propuestas para los taxa han sido propuestas en la parte des-

criptiva y en las conclusiones.

Dendrograma: funda de pene (fig. 136).

Las especies de Myaptex aparecen unidas entre los niveles 62 y 75 y entre

ellas aparece Eccritosia rubriventris. La funda de Eccritosia rubriventris (fig. 84)

difiere de las de Myaptex por la existencia de crestas débilmente quitinizadas

> OE

a lo largo de la parte dorsal de los procesos apicales; este carácter no ha sido

suficiente para apartarla del grupo, aún cuando constituya un buen elemento

de diagnóstico.

Las especies de Hypenetes aparecen separadas; sin embargo, ambos grupos

están unidos al mismo nivel.

El grupo Stizolestes aparece unido a Lochyrus en el mismo nivel 80.5.

Las fundas de estos grupos presentan similitud, pero otras especies aparentan

estar tanto o más próximas al observar subjetivamente las figuras, ellas sin

embargo están distanciadas en el dendrograma, ej. Lycomyia germainia.

Cratopoda emarginata y Cratopoda helix aparecen unidas en el nivel 48;

la observación subjetiva de las figuras 80 y 82 obliga a asignarles un mayor

grado de similitud. Igual situación presentan las especies de Pronomopsis

(tigs. 71 y 74) unidas a nivel 58 en en dendrograma.

El dendrograma de las fundas de pene, por el bajo número de datos

procesados tiene un bajo coeficiente de confiabilidad y evidentemente no

podría ser usado para estudiar el grupo de los asílidos chilenos.

Dendrograma: spermathecae (fig. 137).

Con excepción de la situación presentada por las especies Aratopogon

cyanogaster (Loew), Aratopogon fulvicornis (Macq.) (= Oberon fulvicornis

(Macq.)), Neoderomyia fuloipes (Phil.) (= Oberon fulvipes (Phil.) y Euthrix

venustus (Phil.) (= Seylaticus venustus (Phil.)) que se discuten en mayor detalle

al analizar el dendrograma de las fundas de pene más las spermathecae en

conjunto y en las conclusiones, este dendrograma merece las siguientes con-

sideraciones.

Las dos especies de Megametopon, M. immisericorde y M. occidentale

están unidas a nivel 46, salvo por la diferencia de las cápsulas y ductos, de-

bieran estar unidas a un nivel más alto, como lo demuestra la observación de

las figuras 99 y 101, o al menos más cerca entre ellas que Megametopon

immaisericorde de las especies de Cratopoda.

Las especies de Lochmorhynchus están unidas entre los niveles 43 y 46,

lo que al observar las figuras 88, 89 y 91 aparece como bajo. En estas sperma-

thecae han incidido tal vez con demasiado peso los caracteres: paralelismo

de los brazos de la furca; ápice de los brazos; largo de los ductos expulsores

y capsulares y unión interior de los brazos de la furca, caracteres que cons-

tituyen en estas spermathecae uno de los pocos rasgos de variación inter-

específica.

— 60 —

La especie Creolestes keiseri se une a las otras dos especies del género,

C. rubricornis y €. nigriventris en el nivel 49. De la observación de las figu-

ras 32, 35 y 36, se desprende que es la constitución de la furca el principal

carácter que ocasiona esta separación. En esta especie la furca presenta bordes

de débil quitinización, lo que proporciona alguna indefinición en la estruc

tura, difícil de precisar y transformar en parámetros usables por el compu-

tador.

El bajo nivel en que la especie Stizolestes may: se une al resto de las

especies del género (nivel 52), se debe a una situación semejante a la sucedida

en Lochmorhynchus.

Las especies de Dasycyrton se unen al nivel 54, lo que se confirma al

observar las figuras 37, 39 y 41, especialmente la fig. 41 de Dasycyrton tener.

Esto se discute en el capítulo de conclus'ones.

Dendrograma: spermathecae más fundas de pene (fig. 138).

Araiopogon fulvicornis (Macq.) (= Oberon fuluicornis (Macq.)) y Neo-

deromyia fulvipes (Phil.) (= Oberon fuluipes (Phil.) están oonectados a nivel 47

con varios géneros entre ellos. Aratopogon fulvicornis (= Oberon fulvicornas)

está unida a las otras dos especies de Araiopogon estudiadas en el nivel 65,

de ahí que el cambio de género propuesto, de Oberon a Aratopogon para la

especie fulvicornis (Macq.) resulte apoyado por el estudio de estas estructuras.

El cambio de fuivipes (Phil.) del género Oberon al nuevo género Neoderomyia,

resulta también acorde con el resultado de este estudio. Euthrixius venustus

(Phil.) (= Scylaticus venustus (Phil.)) y Scylaticus chilensis (Macq.) aparecen

unidos a nivel 47, resultando más próximos a otras especies que entre ellos.

Por ello se propone el cambio de género de venustus (Phil.).

La especie Eretomyia tumbrensis está unida a Cratolestes chilensis en

el nivel 58, y Cratolestes chiliensis a Cratolestes wirthi en el nivvel 47 y

wirthi a Lochmorhynchus griseus en el nivel 49, de ello se inferiría que

Eretomyia tumbrensis y Cratolestes chiliensis formarían un grupo aparte de

Cratolestes wtrthi y Lochmorhynchus griseus, del mismo modo Lochmor-

hynchus puntarenensis aparece unida sólo al nivel 45 con el resto de las

especies de Lochmorhynchus y al nivel 47 con Philonerax chilensis. Estas

relaciones, basadas en las fundas del pene y en la spermotheca, demuestran la

proximidad de estos tres géneros, los cuales son, sin embargo, separables por

sus caracteres externos (ver clave en Artigas 1970: 50). :

Las especies estudiadas de los géneros Pritchardia y Dasycyrton se unen

al nivel 58, en circunstancia que Dasycyrton lanosus y Dasycyrton minusculus

se unen sólo en el nivel 58.5.

—61 —

Al observar las figuras 37 a 40 de Dasycyrton se distingue claramente

la semejanza de las dos estructuras y no aparece ajustada la disimilitud pre-

sentada por el dendrograma; aquí es evidente que hay una deficiencia en la

calificación de los parámetros entregados al computador; de todos modos el

género presenta variaciones en otros caracteres, los que se discuten en el

capitulo de conclusiones; similar situación sucede al observar las figuras 58

al 62 de Pritchardia.

Las especies del género Stizolestes aparecen unidas entre sí en las pro-

ximidades del nivel 60. Resulta evidentemente bajo este nivel si se observan

las figuras 122 a 133, las cuales mantienen bastante similitud, de todos modos

este nivel es más alto que el de otras especies.

Las especies Theromyia murina y Theromyia pegnai se unen a nivel 77,

el más alto entre las especies tratadas (cercano al de Hypenetes davidsoni e

Hypenetes digitatus), a este nivel existe la posibilidad que no sean especies

bien separadas, sin embargo, caracteres morfológicos externos permiten se-

pararlas sin dificultad.

El dendrograma de ambas estructuras juntas da mayor confiabilidad por

su mayor número de datos. Demuestra también que las agrupaciones hechas

con la taxonomía clásica son muy semejantes a las hechas sobre estas dos

estructuras por taxonomía numérica. Al usar todos los caracteres que las espe-

cies puedan proporcionar, la confiabilidad será mucho mayor y el dendrograma

resultante dará una acertada relación de proximidad entre los taxa.

CONCLUSIONES

El estudio de las spermathecae y funda de pene de los asílidos chilenos

demuestra que estas estructuras tienen gran valor para definir los grupos

genéricos, dentro de los cuales las especies presentan modelos comunes, con

las diferencias específicas esperables. Para la especie Cratopoda helix (Bromley)

se hizo una serie de disecciones de 10 individuos de diferentes lugares y fechas

de colección con el fin de apreciar la variación individual existente; el estudio

demostró que hay gran constancia y que sólo se producen diferencias en la

longitud de los ductos (las furcas y cápsulas son muy poco variables) y dife-

rencias de observación, derivadas de los desperfectos que sufren durante la

preparación y el montaje. Estas diferencias pueden llevar a error cuando

se hace una sola disección por especie, lo que lamentablemente sucede a

menudo en especies escasas de las cuales mo se dispone suficiente material

sacrificable; así y todo, los errores se circunscriben a detalles de formas y no

A AE

de relaciones de tamaño. Las cápsulas, cuando globosas, tienden a aumentar

su ancho por el aplastado, igualmente sucede con los ductos expulsores. Otra

fuente de error es el torcimiento que se obtiene involuntariamente con los

ductos, lo cual lleva en caso de ductos muy cortos a un apreciable error en

longitud, pero esto es subsanable mejorando la técnica de montaje y el

cuidado en la observación. La observación de detalles debe hacerse siempre

con microscopio de contraste de fase, de otro modo hay partes como las micro-

cápsulas, los canalículos y los pequeños procesos de inserción muscular que

se pierden con los microscopios simples.

Estudiar estructuras relacionadas con el aparato reproductor, implica con-

siderar especialmente el proceso de especiación en base al aislamiento repro-

ductivo. Si las estructuras genitales externas tienen valor por formar una

barrera a la cópula cuando mecánicamente las estructuras de ambos sexos

no ajustan, la spermatheca, con toda su complejidad de longitud de ductos,

válvulas, glándulas (productos que llenan los ductos y las cápsulas), inserción

del ducto común a la bursa copulatrix, etc. forman indiscutiblemente una

barrera física y química a los espermatozoides extraespecíficos, obstaculizando

la primera fase del mecanismo de fertilización (llegada de los espermios en

buen estado hasta los huevos).

Sobre las tribus y subfamilias

Al analizar las spermathecae y fundas de pene de las especies chilenas

de acuerdo a la agrupación en tribus y subfamilias propuestas por Hull 1962,

p. 25, se encontró que no hay modelos comunes para ninguno de estos grupos.

Sin embargo, al proponer otra ordenación de géneros en taxa supragenéricos,

deben considerarse estas estructuras, pues demuestran un alto grado de ho-

mogeneidad dentro del género.

Sobre el género Dasycyrton Philipp:

Al estudiar ias spermathecae de las especies lanosus Artigas, minusculus

Artigas y tener (Bigot) (figs. 37, 39 y 4 respectivamente), se encontró que la

spermatheca de tener es, en varios aspectos, diferente a las de lanosus y

minusculus. Sin embargo, las diferencias pueden ser sólo a nivel específico,

si se acepta que los extremos de los ductos en tener forman un débil espi-

ral que se deshace fácilmente al aclarar el especimen y luego con el montaje

y que la furca al presentar extremos débilmente quitinizados pueda pre-

sentar formas irregulares que sufrieran modificaciones importantes después

de alcanzado el estado adulto; igual cosa podría suceder con el proceso

basal. Si se aceptan estos criterios se podría aceptar que su spermatheca

es similar a las de las otras especies. Al estudiar los caracteres externos de

estas especies encontramos dos formas de cara, una angosta presente en lanosus

y otra ancha presente en el resto de las especies, incluída tener; sin embargo,

no hay coincidencia entre este carácter y las spermathecae, pues lanosus

(cara angosta) y minusculus (cara ancha) tienen spermathecae semejantes, no

así tener y minusculus, ambos de cara ancha. Hay gran proximidad entre

los géneros Dasycyrton y Holopogón (ver discusión en Artigas 1970: 91-92),

por ello se estudió la spermatheca de un Holopogón sp. del norte de Méjico,

cedido por el Dr. Ch. Martin, fig. 42. Esta spermatheca es en cierto modo

próxima a la de D. tener pero hay diferencias en la furca y en los ductos

expulsores, aunque los ductos capsulares son silimares.

Dasycyrton reúne especies con algunas inconsistencias morfológicas, pero

hasta donde es posible concluír con los antecedentes conocidos, éste es un

buen género, y no se proponen modificaciones.

Sobre los géneros Araiopogon Carrera y

Oberon Carrera y Papavero

Los géneros Aratopogón Carrera compuesto de 5 especies: choapensis

Artigas, cyanogaster (Loew), fraternus (Bigot), gay (Macquart) y perniger

(Schiner), y el género Oberon, compuesto de 3 especies: fulvicornis (Macquart),

fuluipes (Philippi) y velutinus Carrera y Papavero (según Artigas 1970: 65-77

y 151-155) sufren las siguientes modificaciones propuestas en este trabajo, o

merecen las consideraciones que se indican.

l.— La especie Aratopogon cyanogaster (Loew) difiere de otras especies

dei género por ia genitalia de los machos, especialmente por los grandes

epandria (ver Artigas 1970, fig. 171), además presenta una importante di-

ferencia en el plan general de la spermatheca y funda del pene (figs. 15 y 16).

La morfología externa sin embargo posee características que la aproximan

bastante al resto de las especies, especialmente forma de la cabeza, mystax,

cubierta pilosa, cerdas de las patas, venación alar, etc. Por ello se puede

considerar esta especie como perteneciente al género pero distante de las

demás especies, las cuales resultan del análisis efectuado, bastante próximas

entre sí. Aratopogon cyanogaster (Loew) debe haber iniciado su especiación

antes que las otras especies.

— 64 —

2.— La especie Oberon fulvicornis (Macquart) (según Artigas 1970: 152),

y que anteriormente ha sido asignada a varios géneros como: Dasypogon,

Seylaticus, Triclis, Pritchardia y Araropogon, debe quedar de acuerdo con

el presente estudio, asignada al género Aratopogon, ubicación consecuente con

la indicada por Carrera 1953: 276 y Hull 1962: 282,

3.— La especie brasilera Oberon velutinus Carrera y Papavero (figs. 4 a-c),

especie tipo del género, está distante de las otras dos especies chilenas asig-

nadas a este género, fulvicornis (Macquart) y fulvipes (Philippi). La especie

brasilera queda como especie única del género y fuluipes (Philippi) forma el

nuevo género Neoderomyia propuesto en este trabajo, como especie única

del género (figs. 2, 17 y 18).

El género Aratopogon se separa de otros géneros próximos por su mystax

de escasas cerdas reducidas al borde oral; por los epandria divididos en la

base, formando claramente dos elementos pequeños; por un pequeño aplasta-

miento en el borde distal del último tergite abdominal de las hembras y

por el característico plan general de la spermatheca y funda del pene, según

se muestra en las figs. 5-9.

Sobre las especies chilenas del género Seylaticus Loew

Este género de amplia distribución (Neotropical, Paleártica, Etiópica y

Oriental), con 31 especies, 5 en Chile (Artigas 1970: 170) presenta en las

especies chilenas dos formas en relación con el mystax, y otros caracteres:

a) cara con una suave giba facial con mystax emergiendo de toda su superficie;

tercer segmento antenal atenuado en la parte ventro-apical y con un corto

microsegmento cilíndrico; epandria fuertemente más angosto en el ápice;

scutellum con 5-6 pares de cerdas gruesas, y b) cara plana, sin giba facial, mystax

escaso y sólo en el borde oral; tercer segmento antenal más bien cilíndrico,

suavemente atenuado, con un corto microsegmento sub-esférico; epandria

anchos, en el borde distal redondeado; scutellum con cerdas débiles. En el

grupo (a) están chilensis (Macquart), cuneigaster Artigas y lugens (Philippi),

en el grupo (b) rufipes (Philippi) y venustus (Philippi). Se estudió la sperma-

theca y funda del pene de una especie de cada grupo: chilensis para (a)

(figs. 63 y 64) y venustus para (b) (figs. 65 y 66). Las diferencias de ambas

estructuras son de tal grado que hay que convenir en que ambos grupos

deben estar ubicados en géneros apartes y que éstos forman grupos natu-

rales que permiten su separación en dos géneros.

Como la especie tipo del género Scylaticus zonatus Loew corresponde al

grupo (a), permanecen en Scylaticus las especies chilenas chilensis (Macquart),

cunetgaster Artigas y lugens (Philippi). Las dos especies restantes forman otro

género. Philippi 1865: 690, creó para la especie venustus (Philippi) el género

Euthrix, este nombre es inválido por estar preocupado en Lepidoptera en 1830.

Hull 1962: 144, lo ubica en sinonimia con Scylaticus, además de indicar su

situación de preocupado. Euthrix es, sin embargo, un buen taxon y sólo

cabe renominarlo y para ello se propone el nuevo nombre Futhrixius nm. nov.

RESUMEN

Se establece que la spermatheca y la funda del pene en los asílidos, son

estructuras de gran valor sistemático y presentan planes generales morfo-

lógico que se ajustan a los taxa, especialmente a los géneros. Se describen

estas estructuras para 69 especies de asílidos chilenos, reconociéndose la simi-

litud que presentan en un mismo género y las diferencias interespecíficas. En

la segunda parte se hace un estudio por taxonomía numérica basado en estas

estructuras, y se concluye que éste es coincidente en alto grado con la «orde-

nación propuesta en el trabajo anterior del autor (Artigas 1970) usando taxo-

nomía clásica. Este análisis señala también la posición discutible de algunas

especies. Luego de estudiar otros caracteres morfológicos en estas especies,

se propone efectuar las siguientes modificaciones: (a) Oberon fulvicornis

(Macquart) es transferido al género Aratopogon Carrera; (b) Oberon fuluipes

(Philippi) se designa como especie tipo del nuevo género Neoderomyia;

Oberon velutinus Carrera * Papavero (Brasil); (d) las especies Scylaticus

rufipes (Philippi) y venustus (Philippi) se asignan a Euthrixius, momen novum

para Euthrix Philippi (preocupado en Lepidoptera). Se discuten las diferencias

entre el género Deromyia Philippi y el nuevo género Neoderomyia. Se cambia

el nombre del género Eremomyia Artigas (preocupado en Diptera) a Eretomyia

nomen novum. El trabajo se ilustra con 138 figuras, incluídos 3 dendro-

gramas.

AS RA CT

The spermatheca and the penis sheath are recognized as structures of

great systematic value in the Asilidae as they follow general morphological

patterns which agree with the taxa, particularly at the generic level. These

structures are described for sixty nine species of chilean Asilidae stressing

the similarities within each genus and the interspecific differences exhibited.

In the second half of the paper a study of numerical taxonomy, based on

these structures is presented and it is concluded that this study fits very

closely with the arrangement proposed by the author (Artigas 1970) in his

former paper following classical taxonmomy. As a follow up of a study of

other external features in the species under consideration, the following

modifications are proposed: (a) Oberon fulvicornis (Macquart) is transferred

to the genus Aratopogon Carrera; (b) Oberon fuluipes (Philippi) is designated

as type species of the new genus Neoderomyia; (c) the genus Oberon Carrera

Y Papavero is left only with the type species Oberon velutinus Carrera e

Papavero (Brasil); (d) the species Scylaticus rufipes (Philippi) and venustus

(Philippi) are included within Euthrixtus, momen novum for Euthrix Philippi

(preocupied in Lepidoptera). The differences between the genus Deromyia

Philippi and the new genus Neoderomyia are discussed. The generic name

Eremomyia Artigas (preocupied in Diptera) is changed to Eretomyla nomen

novum. The paper includes 138 figures, included 3 dendrograms.

ETPERATURA” CEFADA

ARTIGAS, JORGE N.

1970 Los Asilidos de Chile. Gayana Zool. 17, 472 pp., 504 figs.

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1962 Saropogonini Neotropicais (Diptera-Asilidae, Dasypogoninae).

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STUARDO, CARLOS

1946 Catálogo de los Dipteros de Chile. Imprenta Universitaria,

Santiago, Chile. 250 pp.

Fig. 1.— Diagrama de una spermatheca con nomenclatura y medidas.

Ah microcapsula

capsula

canaliculos glandulares

ducto capsular

-—canaliculos glandulares

—malvula

—— ducto expulsor

——apodemas de inserción

muscular

brazo de la furca

bursa copulatrix

(en parte)

tramo horizontal

de la furca

proceso basal

Fig. 2.— Neoderomyia fulvipes n. comb., antena.

Fig. 3.— Deromyia fuscipennis, antena.

Fig. 4.— Oberon velutinus a) genitalia Y, vista lateral.

b) funda del pene, vista lateral.

c) spermatheca.

Fig

Fig.

Fig

Fig.

. 5.— Aralopogon traternus

. 6.— Araiopogon fraternus ¿F

. 8.— Araiopogon fulvicornis

9.— Arailopogon gayi g

10.— Araiopogon gayi 9

11.— Deromyia fuscipennis

12.— Deromyia fuscipennis

13.— Deromyia nigriventris

14.— Deromyia nigriventris

7.— Araiopogon fulvicornis ¿F

Fig. 15.— Araiopogon cyanogaster Q

Fig. 16.— Araiopogon cyanogaster Y

Fig. 17.— Neoderomyia fulvipes n. comb. (= Oberon fulvipes) Z

Fig. 18.— Neoderomyia fulvipes n. comb. (= Oberon fulvipes) 2

Fig. 19.— Theromyia pegnai 9

Fig. 20.— Theromyia pegnai Y

Fig. 21.— Theromyia murina 9

Fig. 22.— Theromyia murina GF

Fig.

23.— Obelophorus terebratus 9

24.— belophorus terebratus ¿F

25.— Obelophorus landbecki 9

26.— Hexameritia micans Q

27.— Hexameritia micans G

28.— Alyssomyia bulbosa G

29.— Alyssomyia bulbosa 9

30.— Alyssomyia pampina

31.— Alyssomyia brevicornis 2

. 32.— Creolestes nigribarbis 9

. 33.— Creolestes nigribarbis

. 34.— Creolestes keiseri Y

. 35.— Creolestes keiseri Q

. 36.— Creolestes rubricornis 9

. 37.— Dasycyrton lanosus 2

38.— Dasycyrton lanosus g

39.— Dasycyrton minusculus

. 41.— Dasycyrton tener Q

. 42,— Holopogon sp. 9

. 43,— Graptostylus dolosus ¿F

. 14.— Graptostylus dolosus 2

. 45.— Dasypecus heteroneurus

, furca

. 40.— Dasycyrton minusculus F

Fig.

46.— Hypenetes

47.— Hypenetes

48.— Hypenetes

49.— Hypenetes

50.— Hypenetes

51.— Hypenetes

.— Hypenetes

53.— Hypenetes

54.— Hypenetes

critesi Q

critesi Z

punctipennis Q

punctipennis $

valentinei 9

digitatus F

digitatus Q

davidsoni Q

davidsoni g

Fig.

55.— Hypenetes magellanicus GF

56.— Hypenetes fucosus Q

57.— Hypenetes fucosus GF

58.— Pritchardia

59.— Pritchardia

60.— Pritchardia

61.— Pritchardia

62.— Pritchardia

curicoensis

tertialis

hirtipes

63.— Scylaticus chilensis

64.— Scylaticus chilensis g

Fig.

65.— Euthrixius venustus n. comb.

66.— Euthrixius venustus n. comb.

67.— Andrenosoma rufiventris 5

68.— Andrenosoma rufiventris Q

69 .— Lamprozona auricincta Já

70.— Lamprozona auricincta 9

71.— Pronomopsis

AR Pronomopsis

1 Pronomopsis

14 — Pronomopsis

talabrensis Z

talabrensis Q

rubripes 9

rubripes g

— 86 —

AAA

Fig.

. 75.— Cratolestes wirthi q

. 76.— Cratolestes wirthi ¿

77.— Cratoiestes chilensis Q

78.— Cratolestes chiliensis ¿G

79.— Cratopoda emarginata 9

80.— Cratopoda emarginata ¿

. 81.— Cratopoda helix 9

. 82,— Cratopoda helix g

. 835.— Eccritosia rubriventris

84.— Eccritosia rubriventris ¿G

OPE

Fig. 85.— Eretomyia tumbrensis n. comb. lo

Fig. 86.— Eretomyia tumbrensis n. comb. gd

Fig.

87.— Lochmorhynchus

88.— Lochmorhynchus

89.— Lochmorhynchus

90.— Lochmorhynchus

91.— Lochmorhynchus

92.— Lochmorhynchus

griseus Z

griseus Q

borrori 9

borrori g

puntarenensis Q

puntarenensis Y

00.

Fig.

93.— Lochyrus crassus Q

94.— Lochyrus crassus F

95.— Lochyrus frezieri g

96.— Lochyrus frezieri Q

97.— Lycomyia germainii Q

98.— Lycomyia germainii ¿g

Fig. 99.— Megametopon immisericorde Q

Fig. 100.— Megametopon immisericorde ¿Z

Fig.

101.— Megametopon occidentale 9

102.— Megametopon occidentale ¿Z

103.— Menexenus concepcionensis Q

104.— Menexenus concepcionensis á

Mo 6 1

Fig.

105.— Myaptex virilis Q

g. 106.— Myaptex virilis Y

. 107.— Myaptex hermanni 9

. 108.— Myaptex hermanni $

g. 110.— Myaptex brachyptera 9

. 111.— Myaptex vexillaria 9

112.— Myaptex vexillaria g

. 113.— Nesiotes chiloensis 9

. 114.— Nomomyia ivetteae Q

. 115.— Nomomyia ivetteae Q

. 116.— Nomomyia murina 2

. 117.— Nomomyia murina g

118.— Rhadinosoma calderense

119.— Rhadinosoma calderense

. 109.— Myaptex brachyptera G

120.— Philonerax chilechicoensis

121.— Philonerax chilechicoensis

122.— Styzolestes

123.— Styzoiestes

124.— Styzoiestes

125.— Stizoiestes

126.— Styzolestes

127.— Styzolestes

128.— Styzoiestes

129.— Styzolestes

130.— Styzolestes

151.— Styzoiestes

132.— Styzolestes

133.— Styzolestes

134.—

aureomaculatus

mayi

modellus

modellus Z

nigriventris gg

nigriventris Q

pamponeroides Y

pamponeroides

Zoticus toconaoensis Y

135.— Zoticus toconaoensis Q

— 96 —

Fig. 136.—

Neoderomyia fulvipes

Euthrixius venustus n.

Eretomyia tumbrensis

n. comb. (= Oberon fulvipes)

(= Oberon fulvipes)

comb. (= Scylaticus venustus)

n. comb. (= Eremomyia tumbrensis)

3SUIJIPID) DUWOSOUIPDYY

SISUILONÍIIUO) - SNUIIUIN

SIJJUIALIQNJ DISOJII3

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SIJJUIAIJNJ DUWOSOUIJPUY

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DOIIMSNISAAIEAIN

.136. Fundas

Fig

60 -

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Siju3SAIJDIU DIÁWOJSQ

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SMyDy1bIp sayaduadAH

IlUOSPIADP S9J9UIÍAH

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SadiyJIy DIPJDYIYJH

SI]DI)J19) DIPJDYINIH

Fig. 136. Fundas de pene.

85 -

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OI13N33 IJAIN

Araiopogon fulvicornis (= Oberon fulvicornis)

Eretomyia tumbrensis n. comb. (= Eremomyia tumbrensis)

Euthrixius venustus n. comb. (= Scylaticus venustus)

Neoderomyia fulvipes n. comb. (= Oberon fulvipes)

— 100 —

mumuna6 Di Auo3Á7

Sadam, 1OJaqO

SIUJODIA NI VOJIQO

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Fig. 137. Spermatt

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Fig. 137. Spermathecae.

Fig. 138.—

Araiopogon fulvicornis (= Oberon fulvicornis)

Eretomyia tumbrensis n. comb. (= Eremomyia tumbrensis)

Euthrixius venustus n. comb. (= Scylaticus venustus)

Neoderomyia fulvipes n. comb. (= Oberon fulvipes)

— 102 —

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13N33 I3AIN

CONTENIDO

TOO dUECCION aereas

Material: spermathec:

funda del pene

Métodos

Descripción de las spermathecae y fundas de pene de los asilidos

chilenos

Subfamilia Dasypogoninae

Tribu Dasypogonini .............

Aratopogon Carrera

Deromyia Philippi

Neoderomyia n. gen.

Saropogon Loew .........

Theromyia Williston

Obelophorus Schiner ....

Tribu Laphystini

Hexameritia Speiser .

Tribu Stenopogonini

Alyssomyia Hull

Creolestes Hull

Dasycyrton Philippi

Dasypecus Philippi

Euthrixtus nomen novum

Graptostylus Hull ................

Leptochelina Artigas

Pritchardia Stuardo

Prolepsis Walker .............

Seylaticus Loew

Subfamilia Lapbhriinae mmm ee ete

Mapa And AER A RO

UNA REO OM RA AI A A AS

Tribu Atomosini dee

Lamprozona ÍLoew .....inmnciocc.oomms.. A A ci

Subfamilia Megapodina€ o... E IRE to e

EnOmOntTopsis Elena cat oponense atrae od? A A as

Subfamilia Asilinae ... O E cos AE

Atractocoma Artigas . E pan

Chilesus Bromley cr a MO A A A A A e o

Crautolestes Ea Mb tU ESO LE PR EOS ta UTA

Cratopoda Hull... ES, A A o ME o:

Eccritosis Schiner E E E o A ondas: IAS

Efferia Coquillet ......... A A

ELO TINLa ORDEN: IVOUUME sama ESA Rós

OCIO REUS a a e eE ON

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ESCASA AAA E A O A O NU CREED uti cu ES:

NAO PROA CUATE A eo a ca

NARA NA E E NE UA A O ME A DEE oa bool

Menexenus Artigas ..... A e o o Noa

Myaptex Hull AS IO Md RA oa

Nestotes Artigas ............ a aa:

MONTONUYUIO AICTAS ii ad STA, q Acne

UU NEnda > DEOMÍEY tdci A A ds

Rhadinosoma Artigas cinc.

Stizolestes Hull EN

DNS Y A o Opel

Las spermathecae y fundas de pene como Huente de información para

el procesamiento de los asilidos chilenos mediante la taxonomía

NUMENCA ta dcn O Ea rl eii A

Caracteres usados: spermatheca

funda del pene

Programación :

Discusión de los dendrograma 1S

Conclusiones Ea

Sobre las tribus y balas UN A LA Ae

Sobre el género Dasycyrton Philippi NES RA

Sobre los géneros Aratopogon Carrera y Papavero y Oberon Carrera

NA Rapayero! 2... MA ea al o

Sobre las especies chilenas del género Scylaticus Loew

Resumen e

Abstract Sete e Ms Pi

Literatura citada . dE A ; e REA DI) Le

Láminas

Contenido

— 106 —

32,

EASFDAA

IRRESVATISPION

SE TERMINÓ

DE IMPRIMIR EN LOS

TALLERES DE LA IMFRENTA

UNIVERSIDAD. DE CONCEPCIÓN

EL 13 DE OCTUBRE DE 1971

l eS “43 a) Er ES q lar e srt 4

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto Central

de Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica y otra

Zoológica, incluyéndose dentro de cada Serie trabajos bio-

lógicos en su sentido más amplio, es decir, si un trabajo

versa básicamente sobre plantas o animales, se incluirá

dentro de una de las dos categorías.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tendrá una secuencia periódica, sino que

los números se publicarán tan pronto como la Comisión

Editora reciba las comunicaciones y su numeración será

continuada dentro de cada Serie.

La Comisión Editora agradece profunda y sinceramente

el valioso apoyo del señor Rector y autoridades universi-

tarias.

Gayana

INSTITUTO CENTRAL DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

MÍ

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Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

Casilla 301 — Concepción

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