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GAYANA

AA DE -BLFOLOGIA

ZOOLOGIA TOTS N2..25

( DEC 26 1974

SS terms

ANALISIS CUALI Y CUANTITATIVO DE LOS EQUINO-

DEMOS DE LOS FONDOS SUBLITORALES BLANDOS

DE LA BAHIA DE CONCEPCION, CHILE

Por

L. ALEJANDRO YAÑEZ A. y JORGE G. CASTILLO A.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

INSTITUTO DE" BIOLOGDA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR : Mario Alarcón A.

EDITORES

Mario Alarcón A. Lajos Biro B.

Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

NETAS O DE BIOLOGIA

ZOOLOGIA 1IT3S Ne 25

ANALISIS CUALI Y CUANTITATIVO DE LOS EQUINO-

DERMOS DE LOS FONDOS SUBLITORALES BLANDOS

DE LA BAHIA DE CONCEPCION, CHILE

Por

L. ALEJANDRO YAÑEZ A. y JORGE G. CASTILLO A.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, 1 : 14 (1848).

ANALISIS CUALI Y CUANTITATIVO DE LOS EQUINO-

DERMOS DE LOS FONDOS SUBLITORALES BLANDOS

DE LA BAHIA DE CONCEPCION, CHILE (1)

Por

ALEJANDRO YAÑEZ A. y JORGE G. CASTILLO A. (2)

INTRODUCCION

Con el objeto de estudiar las comunidades bentónicas de los

fondos blandos sublitorales de la Bahía de Concepción (36? 40' $ -

732 02 W), se inició a comienzos de 1969 un Proyecto de Investiga-

ción financiado en parte por CORFO y en parte por la Universidad

de Concepción.

Los resultados preliminares de la fase inicial de este proyecto

así como también las características ecológicas generales del área

en estudio han sido dadas a conocer por Gallardo et al (1971, 1972)

y Yánez (1971) sobre la base de los resultados obtenidos en la pros-

pección inicial. Estos autores hacen una clara reseña tanto de los

objetivos específicos del estudio como también de las perspectivas

e importancia desde el punto de vista académico puro como de la

biología marina aplicada.

Entre los objetivos principales se encuentra la identificación y

análisis cuali y cuantitativo de toda la macro fauna asociada a los

fondos sublitorales blandos de la bahía; y dentro de este contexto,

la presente nota tiene por objeto comunicar los resultados del aná-

lisis de la fauna de equinodermos.

(1) Trabajo presentado a la Sociedad de Biología de Concepción en sesión

del 26 de agosto de 1971.

(2) Universidad de Concepción. Departamento de Biología Marina y Oceano-

grafía.

e Oh

MATERIALES Y METODOS

El material estudiado corresponde a la fauna de equinodermos

colectada en 110 estaciones bentónicas en la Bahía de Concepción

(Fig. 1) de acuerdo al muestreo planificado para el estudio de

esta área.

Se obtuvo material de las siguientes estaciones bentónicas:

Asteroidea

Estaciones cualitativas (rastras) : 36 y 71.

Estaciones cuantitativas (dragas) : 45 m2 (2 ejemplares) y 103

(1 ejemplar).

Ophiuroidea

Estaciones cualitativas (rastras) : 11, 13, 33, 36 y 62.

Estaciones cuantitativas (dragas) : 20 (2 ejemplares), 22 ml

(1 ejemplar), 24 m2 (3 ejemplares), 39 (1 ejemplar), 45 ml (39 ejem-

plares), 45 m2 (185 ejemplares), 47 m2 (7 ejemplares), 48 ml (9

ejemplares), 58 (1 ejemplar), 59 ml (1 ejemplar), 101 ml (1 ejem-

plar), 102 (172 ejemplares) y 103 (1 ejemplar).

Echinoidea

Estaciones cualitativas (rastras) : 48.

Estaciones cuantitativas (dragas) : 45 m2 (11 ejemplares).t

El material fue colectado empleándose el método convencional

ecológico cuantitativo descrito originalmente por Petersen, con el

uso de una draga van Veen de 0.1 m? para el muestreo cuantita-

tivo y una rastra triangular de 45 cm de lado para el muestreo

cualitativo.

La fauna capturada fue lavada a través de tamices teniendo

el menor de ellos una malla de trama de 0.1 mm?. El material así

seleccionado fue fijado inicialmente con formalina al 10% diluída

con agua de mar y posteriormente cambiado a fijador etanol 70%.

La biomasa fue determinada mediante el peso húmedo (peso al-

cohólico) de los ejemplares (Yáñez, 1971). El análisis cualitativo

y sistemático fue realizado siguiendo métodos convencionales.

Después de su estudio el material queda depositado en la co-

lección del Laboratorio de Bentos del Departamento de Biología

Marina y Oceanografía, en el Instituto de Biología de la Univer

sidad de Concepción.

RESULTADOS

1.— Análisis cualitativo y sistemático.

De acuerdo a la información bibliográfica existente (Mortensen,

1952; Madsen, 1956; Pawson ,1965 y Castillo, 1968), la fauna de

equinodermos existente en la Bahía de Concepción alcanza a 15

especies que son:

E PON

Asteroidea

O. Phanerozonia

Luidiidae

(*) Luidia magellanica Leipoldt, 1895

Odontasteridae

Odontaster penicillatus (Philippi, 1857)

O. Spinulosa

Asterinidae

(*) Patiria chilensis (Lútken, 1859)

Patiria obesa (H. L. Clarck, 1910)

O. Forcipulata

Asteridae

Cocinasterinae

Meyenaster gelatinosus (Meyen, 1834)

Stichasterinae

Stichaster striatus Miller y Troschel, 1840

Ophiuroidea

O. Ophiurae

Ophiactidae

(*) Ophiactis króyert Litken, 1856

Amphiuridae

(*) Ophiophragmus chilensis (Múller y Troschel, 1843)

(*) Amphipholis squamata (Delle Chiaje, 1829)

Amphipholis laevidisca H. L. Clark, 1909

Echinoidea

O. Stirodonta

(*) Arbacia spatuligera (Valenciennes, 1846)

(*) Tetrapygus niger (Molina, 1782)

O. Camarodonta

(*) Loxechinus albus (Molina, 1782)

Holoturoidea

O. Dendrochirotidae

Cucumariidae

Athyonidium chilensis (Semper, 1868)

Pattalus mollis Selenka, 1868

Phyllophoridae

Pentamera chiloensis (Ludwig, 1886)

De esta lista de equinodermos fueron capturadas sólo las es-

pecies señaladas con un asterisco (*). Estas 8 especies representan

a la fauna de equinodermos asociada a los fondos sublitorales blan-

dos de la Bahía de Concepción. El resto de las especies viven aso-

ciadas a fondos rocosos (Meyenaster gelatinosus, Stichaster stria-

tus) o bien su distribución batimétrica en el área de estudio esta

circunscrita a la zona mesolitoral (Athyonidium chilensis), en

razón de lo cual no se incluyen en el trabajo.

ASTEROIDEA FAMILIA LUIDIIDAE

Luidia magellanica Leipoldt, 1895

Sinonimia restringida:

Luidia magellanica Leipoldt, 1895 : 610. Madsen, 1956 : 16-18,

lérms-1,. Most: 2

Material estudiado:

l ejemplar colectado en la Estación 71 (rastra).

Observaciones:

Madsen (1956) en su trabajo sobre los asteroídeos colectados

por la Expedición de la Universidad de Lund a Chile, hace un

análisis de la especie revalidando el nombre dado por Leipoldt

(1895). Como no tenemos suficientes antecedentes que nos permi-

tan hacer una revisión de esta especie, la consideraremos como

Luwdia magellanica ya que se ajusta a los caracteres que, de

acuerdo a Madsen (1956), permiten separarla de Luidia bellona.

Respecto a su habitat podemos señalar que se encuentra aso-

ciada, preferentemente, a fondos duros (rocosos) o fondos de are-—

na y conchilla.

Distribución:

Esta especie se encuentra desde Perú hasta el Estrecho de

Magallanes: Chile.

ASTEROIDEA FAMILIA ASTERINIDAE

Patiria chilensis (Litken, 1859)

Sinonimia restringida:

Asteriscus calcaratus Gay, 1854 : :427

Asteriscus chilensis Liútken, 1859 : 6l

Asterina gay! Perrier, 1876 : 305

Asterina calcaratus Quijada, 1911 : 162

Patiria chilensis Fisher, 1931 : 2, lám. 3. Madsen, 1956 : 23-24,

lám. 4, figs. 2-3

Material estudiado:

Muestras cualitativas: Estación 36 (1 ejemplar).

Muestras cuantitativas: Estación 45 m2 (2 ejemplares) y Es-

tación 103 (1 ejemplar).

Observaciones:

Esta especie característica del litoral chileno, se encuentra ge-

neralmente asociada a fondos duros (rocosos). Esto explica en parte

los pocos ejemplares capturados. El mayor sólo tenía 25 mm de

diámetro y el más pequeño sólo 7 mm de diámetro.

Distribución:

De acuerdo a Madsen (1956) esta especie se encuentra en la

costa occidental de América del Sur desde Payta : Perú, hasta

Talcahuano : Chile (36? 37" lat. Sur).

OPHIUROIDEA FAMILIA OPHIACTIDAE

Ophiactis króyeri Lútken, 1856

Sinonimia restringida:

Ophiactis króyeri Lútken, 1856 : 25. 1859 : 232, lám. 3, fig. 8.

Lyman, 1865 : 108-109. Ljungman, 1867 : 324. Verril, 1867 :

264-265. Lyman, 1882 : 114-122. Ludwig, 1898 : 756. Clark, 1910 :

241, láms. 3 y 9. Mortensen, 1952 : 16. Castillo, 1968 : 43-45,

lám. 4.

Ophiolepis atacamenstis Philippi, 1860 : 171.

Ophiactis fragilis Ljungman, 1866 : 164. 1867 : 324.

Ophiactis atacamensis Ljungman, 1867 : 324.

Material estudiado:

Numerosos ejemplares provenientes de las siguientes estacio-

nes: Est. 11 rastra (1 ejemplar); Est. 13 rastra (8 ejemplares); Est.

20 (2 ejemplares, 1 juvenil); Est. 22 (1 ejemplar); Est. 33 rastra (10

ejemplares); Est. 36 rastra (numerosos ejemplares); Est. 45 ml (39

ejemplares); Est. 45 m2 (185 ejemplares); Est. 47 m2 (6 ejemplares);

Est. 48 ml (9 ejemplares); Est. 58 (2 ejemplares, 1 juvenil); Est. 62

rastra (4 ejemplares); Est. 102 (172 ejemplares).

Observaciones:

Esta especie típica del litoral chileno, presenta caracteres muy

constantes, excepto en la coloración de los especímenes la cual

varía desde el color rojo al azul o negro, presentando siempre ban-

das transversales en los brazos. La totalidad de los ejemplares es-

tudiados son de color rojo oscuro y las bandas transversales se

presentan aún en los especímenes juveniles.

Ems pl

En relación a su hábitat podemos senalar que esta especie, en

general, se encuentra sobre bancos de Aulacomya ater, Pyura

chilensis, Macrocystis pirifera, etc. En Bahía de Concepción apa-

reció preferentemente asociada a fondos arenosos constituyendo

parte de la infauna del sublitoral de la bahía.

Distribución:

Esta especie se encuentra entre Payta: Perú (5* lat. S) y Val-

divia (362 26' lat. S): Chile. También ha sido encontrada en la costa

occidental de América Central.

OPHIUROIDEA FAMILIA AMPHIURIDAE

Ophiophragmus chilensis (Múller y Troschel, 1843)

Sinonimia restringida:

Ophiolepis chilensis Múller y Troschel, 1843 : 120.

Amphiura (Ophiolepis) chilensis Liútken, 1859 : 217 y 224.

Amphiura chilensis Lyman, 1865 : 12. Verril, 1867 : 335. Lyman,

1875 : 5 y 20, lám. 5, fig. 77. 1880 : 21. 1882 : 125 y 147. Ludwig,

1898 :760.

Amphipholis chilensis Ljungman, 1867 : 315.

Ophiophragmus antarticus Ljungman, 1867 : 315-316.

Amphipholis antartica Ljungman, 1871 : 649.

Amphiura antartica Lyman, 1885 : 20. 1882 : 125 y 146. Studer,

1885 : 146.

Amphiodia chilensis Clark, 1910 : 341, lám. 9, fig. 1. Mortensen,

19527 19.

Ophiophragmus chilensis Fell, 1962 : 15 y 20. Castillo 1968 : 36-39,

lémdintias. a. - D;

Material estudiado:

Cuatro ejemplares provenientes de las siguientes estaciones:

Est. 24 (1 ejemplar juvenil); Est. 47 m2 (1 ejemplar); Est. 59 (1 ejem-

plar) y Est. 101 ml (1 ejemplar).

Observaciones:

De esta especie característica fueron capturados sólo 3 ejem-

plares adultos y 1 juvenil. Las características de todos ellos coinci-

den con las dadas en descripciones anteriores.

Esta especie posee generalmente una corrida de espinas en las

escamas interadiales del borde del disco. Esta característica la

encontramos en el ejemplar juvenil y en el ejemplar de la esta-

ción 59, faltando en los otros. Esta carencia de espinas en algunos

po E

ejemplares así como la escasa diferenciación de las escamas del

borde del disco han inducido a incluir esta especie en el género

Amphiodía como se puede apreciar en la sinonimia.

Relativo al habitat de esta especie podemos señalar que se

encuentra preferentemente asociada a fondos fango-arenosos o bajo

piedras, por lo que constituye parte de la infauna.

Distribución:

En Chile se encuentra desde Talcahuano (362? 37* lat. S.) hasta

el Golío Corcovado (42? 24' lat. S.). También se encuentra en las

Islas Falkland.

Amphipholis squamata (Dele Chiaje, 1829)

Sinonimia Restringida:

Asterias squamata Delle Chiaje, 1829 : 74.

Amphipholis patagonica Ljungman, 1871 : 646. Koehler, 1923 : 113,

lám. 14, figs. 11-12.

Amphiura squamata Lyman, 1875 : 5 y 16. Koehler 1908 : 607.

Mortensen, 1933 : 63.

Amphiura patagonica Lyman, 1880 : 20. 1882 : 125 y 145. Studer,

1885 : 146. Lúdwig, 1898 : 764.

Amphipholis squamata Ljugman, 1871 : 633. Bernasconi, 1926 : 146.

láms. 1-3. Mortensen, 1936 : 292. 1952 : 20. Castillo, 1968 : 39 41,

az, gs 7.

Material estudiado:

Dos ejemplares provenientes de las siguientes estaciones: Est.

24 (1 ejemplar) y Est. 103 (1 ejemplar).

Observaciones:

Los ejemplares son de tamaño muy reducido. El diámetro del

disco del ejemplar mayor sólo alcanza a 2,3 mm. Los caracteres

de estos ejemplares se ajustan a los dados en descripciones an-

teriores.

Esta especie vive generalmente bajo piedras o entre las algas

del litoral chileno.

Distribución:

Esta es una especie cosmopolita conocida en Chile desde los

27? lat. Sur hasta el Estrecho de Magallanes (53* lat. S.).

ios HL

ECHINOIDEA O. STIRODONTA

Arbacia spatuligera (Valenciennes, 1846)

Sinonimia Restringida:

Echinus (Agarites) spatuliger Valenciennes, 1846, lám. 5, fig. 2.

Arbacia spatuligera Agassiz, 1872 : 93.

Material estudiado:

11 ejemplares provenientes de la estación 45 m2.

Observaciones:

Todos los ejemplares estudiados son de pequeño tamaño con

un diámetro máximo de 40 mm. Las púas son delgadas y pun-

teagudas a diferencia de las típicas púas de esta especie en los

ejemplares adultos.

Aunque en general el cuerpo es más pequeño que la especie

Tetrapigus niger presenta, sin embargo, las espinas mucho más

largas (H. L. Clark, 1910).

Distribución:

Esta especie se encuentra desde Guayaquil (Ecuador) hasta

el Sur de Chile (H. L. Clark, 1910).

Loxechinus albus (Molina, 1782)

Sinonimia Restringida:

Echinus albus Molina, 1782 : 175.

Strongylocentrotus albus Agassiz, 1872 : 438.

Strongylocentrotus gibbosus Agassiz, 1881 : 106.

Loxechinus albus Mortensen, 1903 : 122-134, lám. 17. figs. 5-18.

1910 : 52, lám. 6, figs. 1-6 y lám. 16, figs. 2, 44,14 y 16M

Bernasconi, 1925 : 251, lám. 1, figs. 4-6. Mortensen, 1936 : 223.

1943 : 172, lám. 57, figs. 18-19. Bernasconi, 1953 : 23-25.

Material estudiado:

Ejemplares provenientes de la estación 48 (rastra).

Observaciones:

Todos los ejemplares fueron capturados con rastra triangular

por lo que no se incluyen en el análisis cuantitativo de las mues-

tras. Respecto a sus caracteres taxonómicos, no tenemos nada que

agregar a la excelente descripción dada por Bernasconi (1953).

E ON

Es interesante señalar que su rango batimétrico ha sido ampliado,

en la costa de Chile, hasta 100m .(Mortensen, 1952); sin embargo,

Bernasconi (1953) señalando que es una especie típica de la costa

occidental de América del Sur le asigna un rango de 0-340 m.

Distribución:

Esta especie se encuentra desde Callao: Perú, hasta Tierra

del Fuego: Chile. Llega hasta la Isla de los Estados en su disper-

sión oriental (Bernasconi, 1953).

Tetrapygus niger (Molina, 1782)

Sinonimia Restringida:

Echinus niger Molina, 1782 : 175.

Echinocidaris (Tetrapygus) nigra Agassiz y Desor, 1846 : 354.

Arbacia nigra Agassiz, 1863 : 20.

Tetrapygus niger Agassiz y H. L. Clark, 1908 : 73. H. L. Clark,

1910 : 345. Mortensen, 1935 : 582, lám. 70, figs. 10-12 y lám. 87,

figs+rlo- 19.,1952.:48-9.

Material estudiado:

Ejemplares provenientes de la estación 48 (rastra).

Observaciones:

Esta especie vive asociada principalmente a las rocas del li-

toral por lo que no tiene significación en el estudio de los fondos

sublitorales blandos. Podemos decir que su ocurrencia en fondos

blandos es ocasional pero no podemos entregar mayores antece-

dentes de su comportamiento ecológico en la bahía.

Distribución:

Esta especie se encuentra desde Payta: Perú hasta el Sur de

Chile.

2.— Análisis Cuantitativo.

De acuerdo al programa de estudios cuantitativos de la Bahía

de Concepción, se obtuvo 114 dragas provenientes de las 110

estaciones bentónicas del muestreo planificado inicialmente (Fig. 1).

De las 114 dragas consideradas, solamente 13 presentaron fauna

de equinodermos lo que representa un 11,5% del muestreo total.

En la Tabla 1 a continuación se puede ver el análisis cuanti-

tativo porcentual de la fauna de equinodermos.

TABLA L ()

Análisis Cuantitativo y Expresión Porcentual del N* de Individuos y del Peso

Húmedo en las Estaciones que Presentaron Fauna de Echinodermata.

Estaciones No de indiv. N? de indiv. % en No Peso húmedo Peso húmedo Y% en

de fauna de Echinodermata de fauna de Echinoder. Peso

total total (gr) (gr)

20 703 2 0,14 39,135 0,027 0,07

22 ml 193 1 0,91 9,696 0,027 0,47

24 590 3 0,51 59,954 0,081 0,14

39 3.6026 1 0,03 18,990 0,027 0,16

45 ml 102 39 38,22 16,743 1.093 6,28

45 m2 507 198 38,41 88,311 15,808 17,88

47 m2 134 y 2,09 78,493 0,189 0,24

48 ml 141 9 6,38 7,426 0,243 3,27

58 797 1 1,12 103,849 0,835 0,79

59 mil 203 1 0,49 29,674 0,027 0,09

101 ml 80 1 = 28,846 0,027 —

102 537 172 32,20 60,039 91918 8,84

103 204 2 0,96 14,909 0,128 0,85

Totales: 437 23,787

Previo al análisis de estos valores es necesario señalar que

del estudio de las 114 dragas se registraron 52.283 ejemplares de

macrofauna bentónica y 7.404,011 gramos de materia viva (Yáñez,

1971). Ahora bien, del total del N* de individuos registrados, sólo

437 corresponden a Echinodermata lo que significa, aproximada-

mente, el 0,830% en número del total de macrofíauna analizada. Al

mismo tiempo el peso húmedo de los 437 ejemplares, fue de aproxi-

madamente 23,79 gramos lo que significa en forma aproximada el

0,313% del peso total de macrofauna analizada.

Asteroidea apareció con una frecuencia de 1,75% del total

de estaciones (3); representados por 3 ejemplares (2 ejemplares de

Patiria chilensis y 1 juvenil indeterminado) que significan el 0,005%

del número total de individuos y su biomasa alcanza al 0,30% del

peso total de la fauna analizada.

(*) Las estaciones 11, 13, 33, 36, 48, 62 y 71 presentaron fauna de Echinoder-

mata pero no son consideradas en este análisis por tratarse de muestras

cualitativas (rastras).

E MBR

Ophiuroidea apareció con una frecuencia de 10,52% del total

de estaciones representados por 423 ejemplares (417 ejemplares de

Ophiactis króyeri, 4 ejemplares de Ophiophragmus chilensis y 2

ejemplares de Amphipholis squamata) que significan el 0,800%

del número total de individuos y su biomasa alcanza al 0,153% del

peso total de la fauna analizada.

Echinoidea fue detectado en forma cuantitativa sólo en la es-

tación 45 m2, representado por 11 ejemplares de Arbacia spatuligera

que corresponden a un 0,020% del total de la fauna analizada y

cuyo peso representa sólo el 0,130% de la materia viva presente

en las muestras.

Finalmente queremos mencionar que en este análisis no fueron

consideradas las especies Luidia magellanica, Loxechinus albus

y Tetrapygus niger, por tratarse de ejemplares colectados solamen—

te en muestras cualitativas. Aun así es interesante señalar que la

estrella Luidia magellanica se encuentra representada por 1 solo

ejemplar en la estación 71.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

La fauna de Echinodermata, aun cuando aparentemente no

es un grupo muy importante en los fondos sublitorales blandos de

la Bahía de Concepción, ha sido analizada por lo que puede sig-

nificar en la completación futura de un cuadro ecológico completo

de la bahía. Tal vez se puede dar algunas luces en un estudio

próximo de acciones ecológicas interespecíficas de toda la macro-

fauna de la Bahía de Concepción.

De este grupo particular, sólo se pudo constatar la presencia

de 8 especies y con muy pocos ejemplares. Ophiuroidea con 3

especies, Asteroidea con 2 especies y Echinoidea con 3 especies

pero en estos últimos sólo se analizó cuantitativamente Arbacia

spatuligera que fue el único equinoídeo colectado con draga. Las

otras dos especies de erizos fueron colectadas con rastra y de ellas

sólo se hizo un análisis cualitativo.

Este hecho nos indica que la fauna de Echinodermata de los

fondos blandos sublitorales de la bahía, no es abundante ni di-

versificada. Sin embargo, se puede señalar que de las diferentes

Clases de Echinodermata, Ophiuroidea es la más abundante tanto

en N* de individuos como en Peso (Fig. 2). Echinodermata en ge-

neral y preferentemente Ophiuroidea se distribuyen en lo que

Gallardo et al (1972) definen como “zona bordeante interna”; es

decir, se trata de una fauna asociada a fondos de mezclas de fango

y arena fina y en algunos sectores con sedimentos más gruesos. La

fauna más representativa de este sector son los gastrópodos es-

pecialmente Nassarius gayi y el Poliqueto Nephtys ferruginea

(Gallardo et al, 1972).

Por el momento parece interesante aludir la distribución hori-

zontal de la fauna de Echinodermata en la bahía. Ophiuroidea (Fig.

3), Asteroidea y Echinoidea (Fig. 4), no se encuentran asociado a

fondos fangosos, excepto en la estación 20, pero allí sólo fueron

encontrados 2 ejemplares de Ophiactis króyeri de los cuales 1

es un juvenil. En general estos grupos se encontraron asociados

a fondos más gruesos de arena y mezclas de arena y conchillas

(Anexo 1). La mayor ocurrencia se produce en la zona de la "Boca

Chica” de la bahía, donde hay antecedentes que existe una buena

circulación y un flujo de entrada y salida de agua considerable,

especialmente en períodos de baja y pleamar (Yánez, 1971), En

todo caso, la fauna de Echinodermata es más frecuente encontrarla

asociada a sustratos duros (excepto Ophiuroidea que se encuentra

en sustratos más variados), y su ocurrencia en fondos fango-are-

nosos puede ser ocasional.

No obstante el antecedente de una fauna de Echinodermata

poco abundante, no debe ser considerado como gran razón para

postular que estos grupos no juegan ningún papel importante en

la composición faunística de las comunidades macrobióticas ben-

tónicas del sublitoral. Tal vez no tengan gran significación en tér-

minos estadísticos, pero nada podemos agregar respecto de ac-

ciones biológicas interespecíficas. Más aún, las comunidades que

se encuentran actualmente en estudio en la Bahía de Concepción,

se caracterizan por una gran dominancia de Polychaeta y en me-

nor grado Mollusca y estos grupos, a su vez, dominados por muy

pocas especies (Gallardo et al, 1972). Esta fauna dominante, sin

embargo, está asociada a un tipo de fauna secundaria (i.e. Echino-

dermata, Crustacea, etc.) que podría jugar un rol importante en el

progreso continuado de los grupos dominantes. No podemos ol-

vidar que grupos de animales cuantitativamente insignificantes pue-

den desempeñar un importante papel en algún eslabón trófico de

una asociación establecida (Odum, 1959) .

AGRADECIMIENTOS

Los autores expresan sus agradecimientos al Dr. Víctor A. Ga-

llardo por sus valiosos comentarios y facilidades otorgadas en el

Laboratorio de Bentos del Departamento de Biología Marina y

Oceanografía.

A los Profs. Dr. Lisandro A. Chuecas, Ldo. Marco A. Retamal

y Ldo. Jorge G. Hermosilla por la revisión de parte del manuscrito

y por sus atinadas sugerencias.

cri

A la "Comisión para la Investigación, Fomento y Aprovecha-

miento de los Recursos del Mar” de la CORFO que permitió fi-

nanciar gran parte de este trabajo.

RESUMEN

Se hace un análisis cuali y cuantitativo de la fauna de Echi-

nodermata de los fondos blandos sublitorales de la Bahía de Con-

cepción. Se analizan 437 ejemplares obtenidos de 114 muestras

provenientes de 110 estaciones bentónicas, empleándose el método

ecológico cuantitativo de Petersen y con el uso de una draga o

tomafondo van Veen de 0.1 m* y una rastra triangular de 45 cen-

tímetros de lado para el muestreo cualitativo.

De las 114 muestras sólo 13 presentaron fauna de Echinoder-

mata y de las 27 rastras cualitativas sólo 7 presentaron fauna de

Echinodermata. Fueron determinadas 8 especies: Luidia magellanica

LEIPOLDT, Patiria chilensis (LUTKEN), Ophiactis kroyeri LUTKEN,

Ophiophragmus chilensis MÚLLER y TROSCHEL, Amphiopholis

squamata (DELLE CHIAJE), Arbacía spatuligera (VALENCIENNES),

Loxechinus albus (MOLINA) y Tetrapygus niger (MOLINA).

Asteroidea, Ophiuroidea y Echinoidea fueron encontrados aso-

ciados a fondos arenosos y mezclas de fango, arena y conchillas.

En general, Echinodermata está pobremente representado en

el bentos sublitoral de la Bahía de Concepción. Los 437 ejemplares

significan el 0,83% del número total de macrofauna analizada y la

biomasa alcanza ca. 0,313% del peso total de macrofauna estudiada.

SUMMARY

Quali and quantitative studies on the fauna of Echinodermata

from the sublittoral soft bottom of Bay of Concepción have been

carried out. 437 specimens were found in 114 samples collected in

110 benthonic stations, using the ecological quantitative method of

Petersen (i.e., a 0.1 m*? van Veen grab and a 45 cm one each side

triangular dredge for qualitative sampling).

Thirteen out of 114 quantitative samples and only seven of

the 27 qualitative dregded samples showed fauna of Echinoder-

mata. Eight species have been determined: i.e., Luidia magellanica

LEIPOLDT, Patiria chilensis (LUTKEN), Ophiactis króyeri LUTKEN,

Ophiophragmus chilensis MULLER y TROSCHEL, Amphipholis

squamata (DELLE CHIAJE), Arbacía spatuligera (VALENCIENNES),

Loxechinus albus (MOLINA) and Tetrapygus niger (MOLINA).

Asteroidea, Ophiuroidea and Echinoidea were found to be

associated with sandy bottoms and mixture of mud, sand and

shell fragments.

In general, Echinodermata are poorly represented in the sub-

littoral benthos of the Bay of Concepción. The 437 specimens amount-

ed 0.83% of the total number of macrofauna investigated, which

corresponds to ca. 0.31% of the total weight.

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Lirqueén

ee DRAGA y RASTRA

enc

Estero Porco

) Ñ

> Estero Lirquén

BAHIA de CONCEPCION |

ESCALA 1 : 50.000 by

. 1 1 , “ du» | |

A rra

EEBM x= Estación Experimental Biología Marina

MAPA COPIADO UF LA € A m0 cOITaDa POR 6%

DEPARTAMENTO DE MIDMOGMAFIA Y MAYFGACIÓN 2 14

AMADA

Fig. 1.— Mapa de estaciones bentónicas de muestreo cuali y cuantitativo rea-

lizado en la Bahía de Concepción (Enero - Marzo, 1969). (Tomado de

Gallardo et al 1972 : 175).

O as

96.7

“lo N?

AS =ASTEROIDEA

ECH = ECHINOI DEA

OPH - OPHIUROIDEA

49.7

“lo P. 41.5

8.8

0.7 23

A... => as EfH 0PH B. AS ECH OPH

Fit. 2.— A. Expresión porcentual del N* de Individuos de las diferentes Clases

de Echinodermata, en el muestreo general de la Bahía de Con-

cepción.

B. Expresión porcentual del Peso húmedo de las diferentes Clases de

Echinodermata en el muestreo general de la Bahía de Concepción.

ai hs

Mo. Lobería 1.

5 Km

de A

Fig. 3.— Distribución horizontal de las especies de Ophiuroidea en el mues-

treo general de los fondos blandos sublitorales de la Bahía de

Concepción (Enero - Marzo, 1969).

= Estaciones bentónicas.

= Ophiactis króyer:.

Ophiophragmus chilensis.

Amphipholis squamata.

Oe.

yo!

Fig. 4.— Distribución horizontal de las especies de Asteroidea y Echinoidea

en el muestreo general de los fondos blandos sublitorales de la

Bahía de Concepción (Enero-Marzo, 1969).

Estaciones bentónicas.

Luwidia magellanica.

Patiria chilensis.

Arbacia spatuligera.

Loxechinus albus.

Tetrapygus niger.

ANEXO 1

ESTACIONES QUE PRESENTAN FAUNA DE ECHINODERMATA

Y DATOS GENERALES

a) Estaciones Cuantitativas:

20:

22 Bal:

24:

39:

45 ml:

45 m2:

47 m2:

48 ml:

98:

59 ml:

101 ml:

102:

103:

16-169; van Veen-0.1 m?; 31 metros; 36%37' 56''

732 01' 21” long. W.; fango negro.

16-1-69; van Veen 0.1 m2? 35 metros; 36* 36' 09”

732 02' 19” long. W.; conchilla con fango gris.

17-1269; van Veen 0.1 m?; 10 metros; 36* 38' 58”

732 04' 07” long. W.; arena.

17-1269; wan: Veen: 0,1. m2? 4 .metros:. 36? 43' 11”

732 05' 08” long. W.; arena fina fangosa.

20-I1-69; van Veen 0.1 m? 7 metros; 36* 37' 48”

lat.

73204 32” long. W.; arena gruesa con piedra y conchilla.

20-169; van Veen 0.1 m*% 7. metros; 36? 37' 48"

lat.

732 04' 32” long. W.; arena gruesa con piedra y conchillas.

20-1-69; van Veen 0.1 m?; 10 metros; 36? 38' 07”

73203'58” long. W.; arena con conchilla fina.

20-169; van Veen 0.1 m?; 13 metros; 36? 38' 21”

73204" 36” long. W.; piedras con fango.

21-169; van Veen 0.1 m?; 10 metros; 36* 36' 59”

722 58' 30” long. W.; fango negro.

21--69, van Veen 0.1 m?; 7 metros; 36% 36' 56”

722 58' 18” long. W.; arena con conchillas.

—IIIl-69; van Veen 0.1 m?; 30 metros; 36% 36' 44”

73204 52” long. W.; arena.

—III-69; van Veen 0.1 m?; 20 metros; 36* 36' 44”

732 03' 47” long. W.; arena.

—JII-69; van Veen 0.1 m?; 20 metros; 36? 36' 16”

722 02' 54” long. W.; arena.

lat.

Dl:

62:

71:

Estaciones Cualitativas:

15-1-69: rastra triangular 45 cm largo; 10 metros; 36" 41' 39”

lat. S., 722 58'24” long. W.; arena fangosa.

15-1-69; rastra triangular 45 cm lado; 10 metros; 36? 42' 54”

lat. S., 722 59'06” long W.; conchilla, arena fangosa, con-

chas, algas.

17-1-69; rastra triangular 45 cm lado; 7 metros; 36* 43' 51”

lat. S., 73? 00' 02” long. W.; arena fangosa fina.

18-1-69; rastra triangular 45 cm lado; 16 metros; 36* 41' 16”

lat. S., 732 04' 46” long. W.; arena.

20-169; rastra triangular 45 cm lado; 13 metros; 36* 38' 21”

lat. S., 737 04' 36” long. W.; piedra con fango.

21-169; rastra triangular 45 cm lado; 7 metros; 36% 38-112+

lat. S., 72257' 25” long. W.; fango, arena fina algas.

22-1-69; rastra triangular 45 cm lado; 10 metros; 36* 39" 48”

lat.. S., 72? 58130: long. W:; arena» fina" amatilla parduzcar

IMPRENTA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION — 17 DE DICIEMBRE DE 1973

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

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BRIOZOOS MARINOS CHILENOS 1l.

BRIOZOOS DE LA ISLA DE PASCUA l.

Por

HUGO I. MOYANO GC.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

INSTITUTO DE ¡BILOLOGTA

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CHILE

DIRECTOR : Mario Alarcón A.

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EDITORES

Mario Alarcón A. Lajos Biro B.

Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

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“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

BRIOZOOS MARINOS CHILENOS Ll.

BRIOZOOS DE LA ISLA DE PASCUA 1.

Por

HUGO I. MOYANO G.

INTRODUCCION

Durante el curso de un corto viaje a la Isla de Pascua, que

miembros de los Departamentos de Zoología y de Biología Marina

de la Universidad de Concepción efectuaron en agosto de 1972, se

pudo recolectar fauna de la zona de las mareas constituida espe-

cialmente por invertebrados.

Entre éstos aparecieron cinco especies de Bryozoa Cheilosto-

mata que incrustan algas litorales. Como no existía ningún ante-

cedente sobre los briozoos de esta isla en informes faunísticos an-

teriores —Fuentes (1914) y Marcus (1921)— se vio la conveniencia

de informar sobre la colección briozoológica obtenida.

Como era casi imposible que sólo hubiera cinco especies de

este phylum se investigó muestras de arena, en las que se en-

contró restos de otras cinco tal como se señala más adelante. Esto

indica que la fauna Briozoológica de Pascua deparará muchas

sorpresas si se emprenden mayores investigaciones.

Además de demostrar esta desconocida fauna de briozoos era

de interés constatar si el extremo aislamiento de esta isla de las

masas continentales y de los archipiélagos del centro del Pacífico

hubiera inducido la aparición de especies totalmente diferentes. Los

resultados indican que esto ha sucedido, al menos en parte, para

los componentes de la zona de las mareas.

BEN

MATERIALES Y METODOS

Las muestras fueron obtenidas por recolección manual en la

zona de las mareas de la Isla de Pascua entre los días 5 y 10 de

agosto de 1972 por Aurora Quezada (Dpto. de Zoología, U. de

Concepción), María Villarroel (Dpto. de Biología Marina, U. de

Concepción) y por el autor. Se examinó además, la arena recogida

en la playa de Anakena obtenida de entre densas agrupaciones de

Palythoa sp. (Coelenterata, Anthozoa, Zoanthidea) de la que pudo

extraerse trocitos de zoarios o de zoecias fragmentados y en parte

pulidos.

Los especímenes incrustantes de algas se fijaron en alcohol de

70% y los obtenidos de la arena se han montado en bálsamo de

Canadá para preservarlos.

Todos los dibujos fueron hechos con cámara clara Zeiss y las

medidas en milímetros se basan en el promedio de medir 20 zoe-

cias diferentes, señalándose también los valores máximo y mínimo

para cada caso.

Debido al estado fragmentario de las zoecias y zoarios obte-

nidos de las muestras de arena, la determinación específica a di-

ferencia de la genérica ha sido bastante difícil, por lo que algunos

se han determinado sólo hasta el nivel genérico. La clasificación

general suprafamiliar adoptada es la de Ryland (1970).

Orden CHEILOSTOMATA Bu

PARTE SISTEMATICA

A.— Clasificación General de las Especies Estudiac

Suborden ANASCA Le

Supertamiiia INOVICELLOIDEA Jul

Familia AETEIDAE Sn

Género AETEA La

A. anguina (Li

Superfamilia MALACOSTEGOIDEA Le

Familia MEMBRANIPORIDAE Bu

Género MEMBRANIPORA Blc

M. tuberculata (Bi

Superfamilia PSEUDOSTEGOIDEA Le

Familia CELLARIIDAE Hi

Género CELLARIA Ell

Cellaria sp.

Superfamilia CELLULAROIDEA Sn

Familia SCRUPOCELLARIIDAE Le

Género Canda Lo

C. pecten TE

Suborden CRIBRIMORPHA Lo

Familia CRIBRILINIDAE Hi

Género CRIBRILARIA (5

Cribrilaria paschalis n. sp.

Suborden ASCOPHORA Le

Familia SCHIZOPORELLIDAE Ju

Género ESCHARINA Mi

E. pesanseris (S

Familia SMITTINIDAE Le

Género SMITTINA Nc

Smittina sp.

Familia CREPIDACANTHIDAE Le

Género CREPIDACANTHA Le

Crepidacantha anakenensis n..sp.

Familia CELLEPORINIDAE He

Género CELLEPORINA G

C. costazit (A

Orden CYCLOSTOMATA Bu

Supertamilia ARTICULOIDEA Bi

Familia CRISIIDAE Jo

Género CRISTIA Lo

Crisia sp.

Pm 7

Orden

Suborden

Supertamilia

Familia

Género

Superfamilia

Familia

Género

Superfamilia

Familia

Género

Superfamilia

Familia

Género

Suborden

Familia

Género

Suborden

Familia

Género

Familia

Género

Familia

Género

Familia

Género

Orden

Supertamilia

Familia

Género

PARTE SISTEMATICA

A.— Clasificación General de las Especies Estudiadas:

CHEILOSTOMATA

ANASCA

INOVICELLOIDEA

AETEIDAE

AETEA

A. anguina

MALACOSTEGOIDEA

MEMBRANIPORIDAE

MEMBRANIPORA

M. tuberculata

PSEUDOSTEGOIDEA

CELLARIIDAE

CELLARIA

Cellaria sp.

CELLULAROIDEA

SCRUPOCELLARIIDAE

Canda

C. pecten

CRIBRIMORPHA

CRIBRILINIDAE

CRIBRILARIA

Cribrilaria paschalis n. sp.

ASCOPHORA

SCHIZOPORELLIDAE

ESCHARINA

E. pesanseris

SMITTINIDAE

SMITTINA

Smittina sp.

CREPIDACANTHIDAE

CREPIDACANTHA

Crepidacantha anakenensis n..sp.

CELLEPORINIDAE

CELLEPORINA

C. costazii

CYCLOSTOMATA

ARTICULOIDEA

CRISIIDAE

CRISIA

Crisia sp.

Busk, 1852

Levinsen, 1909

Jullien, 1888

Smitt, 1867

Lamouroux, 1812

(Linnaeus), 1758

Levinsen, 1902

Busk, 1854

Blainville, 1830

(Bosc), 1802

Levinsen, 1909

Hincks, 1880

Ellis y Solander, 1786

Smitt, 1867

Levinsen, 1909

Lamouroux, 1846

Thornely, 1907

Lang, 1916

Hincks, 1880

Canu y Bassler, 1929

Levinsen, 1909

Jullien, 1903

Milne-Edwards, 1836

(Smitt), 1873

Levinsen, 1909

Norman, 1903

Levinsen, 1909

Harmer, 1957

Gray, 1848

(Audouin), 1826

Busk, 1852

Busk, 1859

Johnston, 1847

Lamouroux, 1812

DIVA LADY

MIA

e” e .

B.— Descripciones.

Aetea anguina (Linnaeus), 1758

émiimea "Y, “Fig. 1

Sertularia anguina Linnaeus, 1758 : 816.

Aetea anguina (L.); Harmer, 1926 : 194, Lám. 13, Figs. 3-4.

Aetea anguina (L.); Marcus, 1921 : 114, Fig. en texto N* 13.

Aetea anguina (Linnaeus), 1758; Osburn, 1950 : 11, Lám. 1, Fig. 3.

Diagnosis:

Colonias incrustantes, lineales y ramificadas. Zooides tubulares,

con la parte basal estoloniforme adherida al sustrato y con la

distal erguida, curvada y expandida distalmente. Parte zooidal li-

bre anillada finamente hasia el comienzo del ensanchamiento dis-

tal. Parte estolonada no anillada sino que punteada al igual que

la distal libre expandida. Sin heterozoides. Ovicela caduca.

Medidas:

Largo parte erguida 0,750 1,187 0,993

Diámetro parte erguida 0,062 0,075 0,070

Ancho parte expandida 0,100 0,125 0,112

Observaciones:

Los ejemplares estudiados crecen sobre algas de la zona de

las mareas. No difieren mayormente de las características que pa-

ra esta especie da Osburn (1950 : 11) y tampoco se les ha encon-

trado ovicelas.

Distribución:

Especie presente en todos los mares tropicales y templados.

Cosmopolita (Osburn, 1950 : 11). Marcus (1921 : 114) refiere ha-

berla encontrado como epizoo de Crisia denticulata proveniente

de las islas de Juan Fernández.

Membranipora tuberculata (Bosc), 1802

Lámina il, Eigt.2

Flustra tuberculata Bosc (pars), 1802 : 118.

Flustra tehuelcha D'Orbigny, 1847 : 17, Lám. 7, Figs. 10-14.

Flustra peregrina D'Orbigny, 1847 : 18, Lám. 10, Figs. 1-2.

Membranipora tehuelcha D'Orbigny; Kluge, 1914 : 664, Fig. en

texto 40 a-d.

Nichtina tuberculata (Bosc); Harmer, 1926 : 208, Lám. 13, Fig. 10.

Membranipora tuberculata (Bosc), 1802; Osburn, 1950 : 23, Lám.

2, Figs. 4-6.

Membranipora tuberculata (Bosc), 1802; Moyano, 1966 : 8, Lám.

1, Figs. A-B.

Membranipora tuberculata (Bosc, 1802); Viviani, 1969 : 77, Figs.

38-39.

Diagnosis:

Zoario incrustante. Zooides irregularmente rectangulares. Pared

frontal membranosa, con opérculo poco diferenciado, salvo en su bor-

de libre. El gimnocisto forma dos tubérculos proximales gruesos en

cada zooide. Criptocisto de desarrollo variable de bordes ondula-

dos a espinosos. Sin ovicelas, ni avicularias.

Medidas:

Largo zoecial 0,962 0,812 0,677

Ancho zoecial 0,225 0,375 0,291

Observaciones:

Los ejemplares examinados incrustan algas del litoral forman-

do colonias pequeñas. El desarrollo de los tubérculos proximales

es muy discreto por lo que no se ha visto que se fusionen ni que

formen una ancha placa proximal que tienda a reducir la opesia

como a menudo se observa en colonias viejas del litoral chileno

(Moyano, 1966 : 8). Todo esto quizá se deba a la juventud de las

colonias observadas.

Distribución:

Esta especie es considerada como cosmopolita por los diferen-

tes autores, encontrándose en los mares tropicales y templados del

globo. Había sido señalada para Chile por D'Orbigny (1847), Mo-

yano (1966) y Viviani (1969). En la Isla de Pascua fue hallada en

la rada de Hanga Piko y en la Playa de Anakena.

Cellaria sp.

Lámina 1, Fig. 8

Diagnosis:

Zoario cilíndrico, 4 a 6 serial. Zoecias de contorno frontal hexa-

gonal. Criptocisto granuloso, con dos elevaciones criptocísticas la-

terales que se fusionan tanto distal como proximalmente, formando

así un anillo. Abertura semilunar, más ancha que larga, con el

borde proximal arqueado y con un cóndilo pequeño en cada rincón.

Medidas:

Estas corresponden a un trozo de 625 micrones de largo por

250 de ancho. Las zoecias medidas en sus contornos frontales al-

canzan a 250 micrones de largo por 200 de ancho y la abertura

zoecial a 75 de ancho por 40 en sentido distal-proximal.

Observaciones:

El único trozo zoarial encontrado en las arenas de Anakena,

no alcanza a 1 mm de longitud, lo que hace casi imposible deter-

minar la especie a que corresponde. No se puede saber si el zoario

era articulado o no, si había o no avicularias y si las ovicelas iban

en segmentos particularmente ensanchados. Con todo, el segmento

en cuestión guarda cierta relación con Cellaria punctata (Busk),

en acuerdo con lo que para esa especie señala Harmer (1926 : 337,

Lám. 21, Figs. 14-16).

Distribución:

Isla de Pascua, Playa de Anakena.

Canda pecten Thornely, 1907

lémma TI Figs. 9 y 6

Canda pecten Thornely, 1907 : 182, Fig. 2.

Canda pecten Thornely; Harmer, 1926 : 389, Lám. 26, Figs. 25-28.

Canda pecten Thornely; Silen, 1941 : 90,

Diagnosis:

Zoario libre, erguido, unilaminar y biserial. Zoecias de contor-

no externo ovalado, con el borde interno más levantado que el

externo formando así una quilla zoarial frontal. Opesia grande,

estrechada en punta interna y proximalmente por el mayor desa-

rrollo de esa parte del criptocisto. Sin scutum. Con vestigios de

espinas distales orales. Avicularias frontales raras. Con vibracula-

rias posteriores oblicuas, cuyo lado inferior prolongado en un trián-

gulo contiene una depresión circular, de la que nace una radícula

en los zoarios vivientes. Ovicelas hiperestomiales.

Medidas:

Se midió 10 zoecias y una avicularia.

Largo zoecial 0,325 0,375 0,342

Ancho zoecial 0,150 0,188 0,173

Largo avicularia 0,200 0,200 0,200

Ancho avicularia 0,088 0,088 0,088

pre E

Observaciones:

La diagnosis y las medidas se basan en el estudio de 8 pe-

quenñísimos trozos de zooario obtenidos de las arenas de la Playa

de Anakena en la Isla de Pascua. Las partes esqueléticas obser-

vadas, pues no existe un solo vestigio de partes blandas o quiti-

nosas, corresponden con exactitud, como lo comprueban los dibu-

jos que acompañan a esta descripción, a la diagnosis e ilustración

de Canda pecten señalada por Harmer (1926 : 389, Lám. 26, Figs.

25-28). Las diferencias que se pueden notar en nuestras ilustracio-

nes se deben en parte a la variación natural de las colonias y al

desgaste superficial sufrido por los ejemplares contenidos en la

arena. Sin embargo, uno de los trozos examinados presenta una

avicularia frontal que parece no estar restringida a la bifurcación

de una rama a diferencia de lo que señala Harmer (Op. cit.).

Distribución:

Playa de Anakena, Isla de Pascua. Anteriormente ha sido se-

ñalada para la Bahía de Bengala (Thornely, 1907 (Fide Harmer,

1926)) y para Japón, Indonesia y Estrecho de Torres por Harmer

(1926). Por otra parte Silen (1941 : 90) la señala para las Islas Bonín

al sur del Japón.

Cribrilaria paschalis n. sp.

Lámina 1, Figs 3

Diagnosis:

Zoario incrustante, unilaminar. Zoecias ovaladas de pared fron-

tal convexa. Con pericisto frontal formado por alrededor de 13 cos-

tillas, separadas por 2 a 3 poros a cada lado. Primer par de cos-

tillas bifurcado con su rama distal formando el borde proximal de

la abertura zoecial y con la proximal uniéndose al segundo par;

entre ambas ramas y en el centro queda una laguna mediana. Con

abertura semicircular de borde proximal recto, rodeada por 7 es-

pinas en las zoecias no oviceladas y por 4 en las oviceladas. Avi-

cularias interzoeciales de forma variable distribuidas irregularmente,

pudiéndose encontrar hasta 4 o 5 juntas. Mandíbula avicularial

triangular larga, no ensanchada en su extremidad. Ovicela hiperes-

tomial imperforada cerrada por el opérculo.

El nombre específico alude a la Isla de Pascua, lugar en que

la nueva especie fue descubierta.

Medidas:

Se hizo 20 mediciones de todas las estructuras consideradas

salvo en el caso de las espinas y costillas, las que se contaron en

50 zooides cada una.

NE.

Largo zoecial 0,275 0,/500- 0,362

Ancho zoecial D17397:50,250- 0,206

Largo zoecia más ovicela 0375 "ISSO. 0464

Largo abertura zoecial 0,050 0,062 0,055

Ancho abertura zoecial 0,062 0,087 0,078

Largo ovicela TOD OL 00117

Ancho ovicela 0,150. "“0M87 “162

Largo avicularia OST UNO TO

Ancho avicularia 0,062 0,200 0,092

Largo mandíbula avicularia 0,050. 0,125. 0091]

Ancho mandíbula avicularia 0,012 0,062 0,038

N* espinas orales zoecias no oviceladas 6 7 6,920

N* espinas orales zoecias oviceladas 4 4 4,000

N* de costillas frontales 11 17 13,180

Observaciones:

Cribilaria paschalis n. sp. difiere de C. radiata en que ésta

tiene un promedio de 21 costillas frontales y sólo cuatro espinas

orales; de C. innominata porque ésta tiene de 13 a 15 costillas

frontales separadas por 4 a 5 poros y 5 espinas orales; de C. setosa

en el número de poros intercostales frontales, en la carencia de

espinas setosas anteriores y en la forma de las avicularias; de C.

paradas por 3 a 4 poros redondeados, 5 espinas orales y el borde

proximal apertural crenulado; de C. pendulata en que ésta tiene

de 4 a 7 lagunas intercostales, 6 espinas orales y avicularias pe-

dunculadas, y difiere finalmente de C. flabellifera especialmente

en la forma de las avicularias cuya mandíbula es lanceolada en

tanto que la de Cribrilaria paschalis n. sp. es triangular.

Tipos:

El holotipo y los paratipos quedan depositados en el Museo

Zoológico de la Universidad de Concepción, Chile.

Distribución:

Costas rocosas de Anga Piko y rocoso-arenosas de Anakena

en la Isla de Pascua. En estos lugares la nueva especie incrusta al-

gas de la zona intermareal.

Escharina pesanseris (Smitt), 1873

Lámina l, Fig. 7

Hippothoa pes anseris Smitt, 1873 : 43, 76, Lám. 7, Figs. 159-160.

Mastigophora pesanseris Smitt, 1873; Canu y Bassler, 1929 : 422,

Lám. 58, Figs. 4-8.

Mastigophora pesanseris (Smitt), 1873; Osburn, 1952 : 479, Lám.

50. 519.3:

Escharina pesanseris (Smitt); Harmer, 1957 : 998, Lám. 67, Figs.

12, 14, 18 y 19.

Diagnosis:

Zoarios incrustantes. Zoecias alargadas. Pared frontal calcárea

crenulata en que ésta tiene alrededor de 20 costillas frontales se-

granulosa. Abertura zoecial casi circular provista de un seno proxi-

mal profundo de bordes laterales casi paralelos, con 6 a 7 espinas

orales. La abertura está rodeada proximalmente por una saliente

calcárea que se proyecta libremente por sobre la pared frontal

formando una especie de cuello amplio y expandido. Con dos avi-

cularias laterales a nivel de la abertura dirigidas distalmente, las

que presentan una especie de canal distal para la salida de la

mandíbula. Ovicela hiperestomial cerrada por el opérculo, de pa-

red frontal granulosa.

Medidas:

No se da medidas de esta especie pues todo el material se

reduce a dos zoecias.

Observaciones:

Las dos únicas zoecias observadas —una de las cuales afor-

tunadamente es ovicelada— fueron obtenidas de entre las arenas

recogidas en la playa de Anakena.

Obviamente nuestro material carece absolutamente de las par-

tes blandas, pero los caracteres esqueléticos son tan claros que

no se dudó en clasificarlos como pertenecientes a E. pesanseris.

Los ejemplares concuerdan muy bien con la fotografía exhibida

por Canu y Bassler (1928 : 133, Lám. 21, Fig. 9) para ejemplares

de la zona del Golfo de Méjico, y con las que esos mismos autores

señalan para las Filipinas (1929 : 412, Lám. 58, Figs. 4-8). Al com-

pararlas con los dibujos que da Osburn (1952 : 479, Lám. 58, Fig. 3)

se advierten pequeñas diferencias en la ovicela pero los caracteres

generales se mantienen.

En cuanto al esqueleto avicularial de la zoecia ovicelada, se

constata que concuerda perfectamente con la ilustración pertinente

que da Harmer (1957 : 998, Lám. 67, Figs. 12-14, 18 y 19).

Distribución:

Playa de Anakena, Isla de Pascua. Especie circumtropical que

ha sido señalada entre otros lugares para California, Colombia,

Galápagos (Osburn, 1952); Filipinas, Cuba, Golfo de Méjico, Hawai,

Isla Mauricio (Océano Indico), Golfo de Suez, Siam, etc. (Canu y

Bassler, 1929).

Smittina sp.

Lámina Il, Fig. 4

El material disponible se compone de un par de zoecias uni-

das recolectadas en las arenas de la Playa de Anakena en la Isla

de Pascua, las que no permiten la identificación específica.

Ambas zoecias están bastante erosionadas. Aparentemente la

pared frontal es un tremocisto granuloso, lo que daría lugar a in-

cluirlas en el género Smittina en el sentido de Osburn (1952). En

la abertura primaria existe una lírula y por delante de ella un par

de cardelas bien desarrolladas. La avicularia encerrada en la parte

proximal de la abertura secundaria es casi circular, mediana y

apunta proximalmente.

Crepidacantha anakenensis n. sp.

Lámina: U,. Figs. 9 y. 11

Diagnosis:

Zoario incrustante. Zoecias irregularmente romboidales a hexa-

gonales. Espinas marginales distales cortas, no más largas que la

abertura zoecial. Frontal liso, combado, con un gran umbo trans-

versal proximal a la abertura que se extiende entre una y otra

avicularia. Abertura en forma de ojo de cerradura con ánter casi

circular y póster ensanchado lateralmente con su borde proximal

arqueado. Avicularias pareadas a nivel de la separación entre

ánter y póster, con una larga mandíbula setiforme que puede so-

brepasar proximalmente el borde zoecial proximal. Mandíbulas avi-

culariales generalmente paralelas entre si. Ovicela hiperestomial

cerrada por el opérculo, irregularmente mitriforme, con ectoecio li-

mitado a los bordes laterales; con un umbo mediano frontal distal

y con un área ovalada central, más larga que ancha, proximal al

umbo y perforada por numerosos poros.

El nombre de esta nueva especie se refiere a la playa de Ana-

kena en la Isla de Pascua, uno de los lugares en que fue hallada.

¿ES

Medidas:

Largo zoecial 0,425 0,625 ES

Ancho zoecial 0,287 0,600 0,409

Largo ovicela 0,137 0,225 0,160

Ancho ovicela 0,188" — 0,250 0,220

Largo abertura zoecia no ovicelada 0,100 0,125 0,110

Ancho ánter zoecia no ovicelada 0,081 0,112 0,093

Ancho póster zoecia no ovicelada 0,081 0,100 0,085

Largo abertura zoecia no ovicelada 0,087 0,12 0,105

Ancho ánter zoecia ovicelada --- 0,087 0,106 0,092

Ancho póster zoecia ovicelada 0,087 0,112 0,108

Número de poros de la ovicela 6 11 8,850

Observaciones:

Crepidacantha anakenensis n. sp. difiere de C. zelanica. y de

C. kirkpatricki en que éstas tienen las avicularias de ubicación

frontal y muy alejadas de la abertura, amén de que sus mandi-

bulas se cruzan proximalmente; se diferencia de C. crinispina en

el tubérculo o umbo suboral que en la nueva especie es largo y

curvado en sentido lateral formando como un muro de contención

por detrás del borde proximal de la abertura zoecial, en tanto que

en C. crinispina éste es un tubérculo en el sentido clásico, y se

diferencia también en el ectocisto ovicelar, que en C. crinispina

tiene una fila transversal de poros en tanto que la nueva especie

presenta un área ovalada centro-ectoecial perforada conspicuamen-

te. Por este último carácter C. anakenensis n. sp. semeja a C.

kirkpatricki cuya ovicela presenta un ectocisto total o en gran

parte perforado. (Vea Powell, 1967 : 344, Fig. 92b).

Se diferencia por último de C. bracebridgei, en que ésta tiene

una región apertural montada sobre una parte elevada del zooide

y el ectocisto ovicelar casi totalmente perforado.

Tipos:

El holotipo y los paratipos quedan depositados en el Museo

Zoológico de la RA de Concepción, Chile.

Distribución:

Playa de Anakena y Rada de Hanga Piko, Isla de Pascua.

017,

Celleporina costazii (Audouin), 1826

Lámina Il, Fig. 10

Cellepora costazíi Audouin, 1826 : 237.

Lagenipora rota (McG.); Marcus, 1921 : 110, Fig. en texto 12a-d.

Costazia costazi (Audouin), 1826; Osburn, 1952 : 506, Lám. 62,

Figs. 3-4.

Celleporina costazii (Audouin); Harmer, 1957 : 901, Lám. 62, Figs.

1, 46.

Diagnosis:

Zoario incrustomte, irregular, plurilaminar de color blanco sucio.

Zoecias lageniformes, erguidas, dispuestas irregularmente unas so-

bre otras. Pared frontal con poros marginales escasos. Abertura pri-

maria con un seno proximal redondeado, cerrada por un opérculo

de su forma: y dimensión. Peristoma levemente ensanchado, más

bajo proximal que distalmente, con una avicularia aguda a cada

lado dirigida distalmente, o sólo con una de ellas. Con avicularias

interzoeciales espatuladas de gran tamaño. Ovicela globulosa, dis-

tal, con un área fronto-proximal semicircular con poros alargados

distribuidos radialmente.

Medidas:

Largo abertura secundaria 0,187 0,312 0,252

Ancho abertura secundaria 0,150 0,250 0,192

Diámetro mayor ovicela 0,225 0,325 0,278

Largo avicularias peristomiales 0,100 0,212 0,156

Ancho avicularias peristomiales 0,050 0,137 0,095

Largo avicularias interzoeciales 0,275 0,462 0,343

Largo avicularias interzoeciales 0,150 0,300 0,220

Observaciones:

La muestra estudiada fue obtenida de algas recogidas en la

zona intermareal de la playa de Anakena en la Isla de Pascua.

Las dos colonias analizadas incrustaban la parte basal de las al-

gas y competían por el espacio con foraminíiferos arborescentes

de color rojo además de otros incoloros que ocluyen las aberturas

de algunas zoecias.

Los ejemplares concuerdan perfectamente con la descripción

que da Harmer (1957 : 901). Existen algunas diferencias, como por

ejemplo la gran cantidad de avicularias interzoeciaoles espatula-

das y la presencia de muchos peristomas con sólo una avicularia

lateral y no dos como es la regla. La abertura primaria por otra

parte presenta proximalmente un seno más bien bajo y bastante

ancho.

ao O

Distribución:

Playa de Anakena, Isla de Anakena, Isla de Pascua. Océanos

Indico y Pacífico Norte (Hamer, 1957); California (Osburn, 1952)

e Islas de Juan Fernández (Marcus, 1921).

Crisia sp.

Lámina Il, Figs. 12 y 13

En las arenas recolectadas en la Playa de Anakena aparecie-

ron 10 trozos zoariales pertenecientes sin duda al género Crisia.

Estos miden desde 0,750 mm hasta 1,750 mm y corresponden a in-

ternodos separados en algunos de los cuales se ven signos de ra-

mificación. Desafortunadamente no existen ovicelas, lo que imposi-

bilita, en parte, la identificación específica. Por estas razones no se

da medidas ni mayores detalles, salvo la ilustración correspondiente.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Aunque es prematuro hacer un análisis sobre el significado

de la fauna briozoológica de la Isla de Pascua, por lo reducido

de la muestra, es —sin embargo— posible adelantar algunas ob-

servaciones de interés:

a.— El orden Cyclostomata está representado al menos por una

especie perteneciente al género Crisia, no dudándose de la exis-

tencia de otros géneros, pues en las arenas de Anakena se en-

cuentra también pequeños torzos zoariales de la superfamilia

Tubuliporidea.

b.—Es altamente probable que existan especies del orden

Ctenostomata, las que habitualmente pasan desapercibidas por ser

transparentes, o aparentar otros animales tales como esponjas o

hidrozoos.

c.— Como en todos los mares la mayor parte de las especies

pertenece al orden Cheilostomata. Dos de éstas son cosmopolitas:

Aetea anguina (Linnaeus), 1758 y Membranipora tuberculata

(Bosc), 1802; otras dos tienen. dispersión indopacífica: Canda pecten

Thornely, 1907 y Celleporina costazúi (Audouin), 1826 y Escharina

pesanseris (Smitt), 1873 es circumtropical. Otras dos especies in-

determinadas pertenecen a Cellaria y Smittina géneros de dis-

tribución mundial.

d.— Dos especies son nuevas: Cribrilaria paschalis n. sp. y

Crepidacantha anakenensis n. sp. La primera vienen a agregarse

a las señaladas recientemente por Harmelin (1970) y se acerca a

C. innominata (Couch), 1844 de distribución cosmopolita y a C.

flabellifera (Kirkpatrick) 1888 de distribución indopacífica. La se-

gunda está emparentada con C. crinispina Levinsen, 1909, de dis-

tribución igualmente indopacífica. (Vea: Harmer, 1957; Brown, 1952

y Powell, 1967).

e.—$Se observa que la fauna briozoológica de la Isla de Pas-

cua es una mezcla de elementos indopacíficos, circumtropicales y

cosmopolitas, llevados al azar hasta la isla. La presencia de nue-

vas especies a partir de poblaciones establecidas allí y originadas

de otras presentes en los archipiélagos del Pacífico Occidental, po-

dría explicarse por el aislamiento a que han estado sometidas.

AGRADECIMIENTOS

El autor desea agradecer al Dr. Jorge Artigas por la revisión

crítica del manuscrito; a Aurora Quezada y María Villarroel por

su colaboración en la recolección de material y a José Bustos por

la confección de algunas figuras; todos miembros del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Se deja, además, especial constancia de la valiosa ayuda

prestada por el Cuerpo de Carabineros de Chile la Fuerza Aérea

de Chile y la Dirección de Vialidad, Instituciones que en la Isla

de Pascua permitieron materializar la recolección de muestras bio-

lógicas.

RESUMEN

Se estudió una pequeña colección de Briozoos de la zona de

las mareas de la Isla de Pascua, compuesta por diez especies de

las que cinco corresponden a elementos cosmopolitas o circumtro-

picales o indopacíficos; dos son nuevas y tres fueron determinadas

sólo hasta nivel genérico.

Las cinco especies anteriormente conocidas son: Aetea anguina

(Linnaeus); Membranipora tuberculata (Bosc); Canda pecten Thor-

nely; Escharina pesanseris (Smitt) y Celleporina costazii (Audouin)

y las tres indeterminadas pertenecen a los géneros Cellaria, Smittina

y Crista.

Las nuevas especies son: el cribrimorío Cribrilaria paschalis

n. sp. y el ascóforo Crepidacanta anakenensis n. sp.

SUMMARY

The results of a study of a small collection of - Easter Island

intertidal Bryozoans collected in August 1972 by the author and

some other members of the Departments of Zoology and Marine

Biology —Universidad de Concepción, Chile— are presented.

The sample consists of ten species of cosmopolitan, circumtro-

pical and Indo-Pacific origin. The following species Aetea anguina

(Linnaeus), Membranipora tuberculata (Bosc), Canda pecten (Thor-

nely), Escharina pesanseris (Smitt) and Celleporina costazi (Au-

douin) were previously known for the Indo-Pacific area. Three other

species of the genera Cellaria, Smittina and Crista were not able

to be identified to the specific level and two other are described

as new: Cribrilaria paschalis n. sp. and Crepidacanta anakenen-

sis n. sp.

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a E

LAMINA 1

Fig. 1—Aetea anguina (Linnaeus), 1758. La parte basal estoloniforme al

igual que el extremo distal expandido de cada zooide son puntea-

dos a diferencia de la parte anillada.

Fig. 2— Membranipora tuberculata (Bosc), 1802. En cada zooide se ad-

vierten los dos tubérculos proximales irregularmente cónicos.

Fig. 3—Cribilaria paschalis n. sp. La primera costilla frontal bifurcada

(pcb) forma el borde proximal de la abertura y deja en su parte

central un espacio que unido al del lado contrario da origen a un

poro acorazonado (ps). En esta figura sólo se muestra la base de

las espinas orales (bs). La ovicela hiperestomial (ovw) está cerrada

por el opérculo. Las avicularias interzoeciales (avi) desarrollan una

mandíbula triangular larga (mavi).

Fig. 4— Smittina sp. En la abertura primaria se aprecia un par de car-

delas, una lírula y una avicularia elíptica (Escala: igual que en la

Fig: 9):

Figs. 5 y 6.—Canda pecten Thornely, 1907. La figura 5 es una vista frontal

y la 6 una dorsal. Las cámaras de las vibracularias (cv) se disponen

alternada y diagonalmente y cada una lleva en su parte proximo-

lateral una depresión circular (pr) de la que nace una radícula en

los especímenes vivientes.

Fig. 7 —Escharina pesanseris (Smitt), 1873. La pared frontal zoecial y

la ovicelar están ornamentadas con pequeños tubérculos. La ovicela

hiperestomial (ov) cerrada por el opérculo lleva a cada lado una

avicularia (av) de dirección distal. (Escala: igual que en Fig. 5).

Fig. 8—Cellaria sp. Las elevaciones del criptocisto forman un óvalo pues

se unen tanto distal como proximalmente.

=92) —

LAMINA Il

Fig. 9—Crepidacantha anakenensis n. sp. Las avicularias de largas

mandíbulas setiformes (av) están unicadas a nivel del estrechamien-

to de la abertura. Por el lado proximal del póster aparece el ancho

umbo (um) que se extiende entre ambas avicularias. Rodeando el

borde disto-lateral de las zoecias se advierten las espinas margina-

les (esm) así como las aberturas (dietelas) ubicadas entre ellas (om).

Además del umbo, el carácter más relevante de esta especie es

su ovicela con un área frontal oval perforada (afoc).

Fig. 10—Celleporina costazti (Audouin), 1826. Las zoecias urceoladas

llevan una o dos avicularias latero-orales de dirección distal (avo)

y una ovicela hiperestomial distal (ow). Entre las zoecias hay gran

cantidad de avicularias interzoeciales gigantes espatuladas (avg).

Fig. 11—Crepidacantha anakenensts n. sp. La ancéstrula (an) aparece

rodeada de 7 zoecias, que desde un comienzo muestran avicularias

bien desarrolladas (av). La ancéstrula que muestra la base de mu-

chas espinas marginales, tiene la pared frontal totalmente calci-

ficada.

Figs. 12 y 13.— Trozos internodales de Crisia sp.

> EE

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, EL

14 DE DICIEMBRE DE 1973.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

CasiLLA 301 — CONCEPCIÓN

CHILE

GAYANA

III UOTO. DE BIOLOGIA

ZOOLOGÍA LTS N". 2r

CLAVE PARA LA DETERMINACION DE LOS CRANEOS

DE MARSUPIALES Y ROEDORES CHILENOS

Por

DETLEF REISE

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

INSTITUIDO DES BIOEdGGHNA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR : Mario Alarcón A.

EDITORES

Mario Alarcón A. Lajos Biro B.

Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

NAT (DE BTOLOGIA

ZOOLOGIA 19783 NN" 127

CLAVE PARA LA DETERMINACION DE LOS CRANEOS

DE MARSUPIALES Y ROEDORES CHILENOS

Por

DETLEF RElS£zE

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

CLAVE PARA LA DETERMINACION DE LOS CRANEOS

DE MARSUPIALES Y ROEDORES CHILENOS

Por

DETLEF REISE (*)

RESUMEN

Se recomiendan métodos para colectar y estudiar cráneos de

pequeños mamíferos. En una clave ilustrada con 29 figuras de ama-

tomía craneana, se logra la determinación de todas las especies

de marsupiales y roedores silvestres de Chile.

ZUSAMMENFASSUNCG

Es werden die Methoden der Gewodllforschung in Hinsicht auf

das Studium der Kleinsáuger angesprochen. Ein mit 29 Zeichnungen

illustrierter Schadel-Bestimmungsschlússel enthált alle Arten der

wildlebenden Beutel-und Nagetiere Chiles.

INTRODUCCION

En la introducción de su clave para la determinación de los

mamíferos silvestres chilenos G. MANN (1957) se refirió a la si-

tuación en que se encuentra el conocimiento mastozoológico chile-

no. Sin embargo, desde esa fecha no se han realizado cambios sus-

tanciales y las “lagunas” mencionadas por Mann aún persisten.

Diez años después el interés por los mamíferos ha reaparecido, así

(*) Profesor visitante. Departamento de Zoología, Instituto de Biología, Uni-

versidad de Concepción, CHILE.

cabe mencionar “Mammals of Malleco Province, Chile” de J. K.

GREER (1965). La actual comunicación tiene por objeto presentar

una clave para determinar mamíferos del orden marsupialia y ro-

dentia en base al análisis de sus cráneos y cuya finalidad es cola-

borar al conocimiento de estos mamíferos. Nuestra información está

basada en el material colectado por el autor durante 1969 y 1973 en

sus viajes a lo largo de la totalidad del país. A pesar de nuestras

abundantes colectas lamentamos que nuestro aporte no sea com-

pleto ya que en varias especies el material no es numéricamente

satisfactorio. Á pesar de ello y de sus probables deficiencias, es

posible que esta clave obre como un estímulo para estudios zoo-

lógicos ulteriores.

AGRADECIMIENTOS

El autor agradece a la señora Inge de Petzel por la traducción

del manuscrito, al señor Dr. Roberto Donoso-Barros por la revisión

y al señor Dr. Jorge N. Artigas por la ayuda en la publicación del

manuscrito.

METODO

Un método sencillo para obtener cráneos es investigar en los

vómitos de aves de rapiña. Estas expulsan entre los restos alimen-

ticios indigeribles los huesos, dientes, garras y pelos. A mayor abun-

damiento, como los rapaces nocturnos a diferencia de los diurnos

no trituran sus presas, podemos conseguir los crúneos muy comple-

tos con lo que aumentan las posibilidades de identificar los micro-

mamíferos ingeridos por el estudio de las estructuras de cráneos y

dientes.

Las investigaciones de elementos óseos en los vómitos de ra-

paces se iniciaron con los trabajos de UTTENDOERFER y colab.

(1937) quienes trataron, para conocer la importancia de las aves

de rapiña, estudiar los tipos de animales capturados por éstos y

cuyos restos aparecían en los regurgitados. Como puede compren-

derse, estas observaciones tienen una tremenda implicación con

distribución, sistemática y dinámica poblacional. Todos los hechos

observados colocaron a los rapaces como elementos de primera

importancia (KAHMANN 1953 y PIECHOCKI 1957). Las variadas es-

tructuras dentarias representan también un importante rasgo sis-

temático que pudo ser utilizado en gran escala (ZIMMERMANN

1958, REICHSTEIN y REISE 1965). Aún más, BECKER (1954) ha

desarrollado un procedimiento para identificar diferencias sexuales

E EN

utilizando determinados caracteres pelvianos. De acuerdo a estos

antecedentes previos hemos aplicado algunos de estos procedimien-

tos al análisis de los pequeños mamíferos chilenos. Por ejemplo el

método para establecer la edad basado en el desgaste de los dien-

tes preconizado por FELTEN (1952) es aplicable a los cricétidos y

muridos de Chile. La longitud de la mandíbula ayuda en la esti-

mación de la edad en las demás especies (ZIMMERMANN 1955).

Permite, observando su frecuencia dentro de una población, obte-

ner conclusiones generales acerca de los ciclos reproductivos con

lo que simultáneamente nos muestra sus perspectivas sobre la di-

námica de poblaciones (REISE 1972).

ESTUDIO DE LOS VOMITOS DE AVES

El hallazgo de los regurgitados de la lechuza (Tyto alba tuidara

Gray) son frecuentes. Estas aves anidan y duermen preferente-

mente en cuevas y edificios, distribuyéndose en todo el país. Esta

circunstancia permite reunir extensas series durante largos períodos,

las que tienen especial significado en la investigación de la diná-

mica de las poblaciones. Menos frecuente es recoger los vó-

mitos de otros stringiformes que no tienen por ello menos im-

portancia, buscando sus nidos y paraderos. Cabe señalar que dis-

tintos stringiformes frecuentemente se especializan en determinados

biotopos y sin que se pueda descartar sus apetencias preferencia-

les por determinadas presas. Es necesario señalar también que las

fechas de emisión de los regurgitados cronológicamente son dis-

tintas, lo que exige colectar los vómitos separados por su estado

de conservación y calcular la fecha de emisión. Así podemos en-

contrar en un paradero toda una historia en función del tiempo

realizado por una lechuza sobre una determinada población de

roedores y cuyos restos nos muestran frecuencias de las distintas

edades consumidas durante un tiempo prolongado. Todo esto, en

general, indica que es indispensable buscar la mayor cantidad po-

sible de datos, como ser fecha de emisión, lugar y biotopo del

hallazgo, especie de lechuzas, etc., para ganar las más amplias y

diversas informaciones posibles para todo tipo de investigaciones

ulteriores. e,

En la investigación pueden seguirse las siguientes pautas de

análisis:

l.. La más recomendable consiste en humedecer los vómitos, lue-

go desmenuzarlos cada uno digitalmente, guardando los hue-

sos de cada vómito en sendas bolsitas. Este método destruye

poco material y tiene la ventaja de utilizarlo al máximo para

la investigación posterior.

2. Un método poco recomendable, porque destruye mucho ma-

terial, es el que aconseja remojar el regurgitado con jaboncillo

y lavarlo luego utilizando un cedazo bajo agua corriente, ob-

teniendo una masa de huesos, que no sirve para todas clases

de investigaciones.

3. Otra técnica diluye el vómito en sulfuro de bario. Este último

elimina la queratina dejando los huesos como residuo después

de lavarlos. Por el tiempo prolongado que se precisa para este

método, sirve sólo para grandes cantidades de material.

En nuestro trabajo ha sido necesario previamente organizar una

colección comparativa por cuanto algunas especies no son fácil-

mente identificables por su cráneo, como hemos podido comprobar

de acuerdo a muestras. En nuestra relación hemos considerado

sólo a marsupiales y roedores, sin embargo otros micromamíferos

como los murciélagos no podemos incluirlos en forma particular

por cuanto el material a nuestra disposición es insuficiente a la

vez que demasiado fragmentario. Otro factor limitante está dado,

porque hemos basado el mayor número le características en la

utilización de los maxilares superiores como elementos taxonómi-

cos. Ya que raras veces el cráneo conserva su integridad no es

recomendable dar demasiadas importancias a sus características.

Para completar la información hemos elaborado una serie de di-

bujos sobre las mandíbulas para mostrar su variedad y facilitar

las dificultades de identificación junto a una serie esquemática de

los dientes mandibulares (Fig. 29). Con el objeto de completar la in-

formación hemos incluido en el cuadro a varias especies que por su

tamaño están ausentes de los vómitos, como también otras espe-

cies cuyo material todavía no es suficiente para una determinación

exacta (Alkodon andinus y Alkodon sanborni).

Todo dato adicional será agradecido por el autor.

CLAVE PARA LA DETERMINACION DE CRANZOS DE MAMIFEROS

MENORES CHILENOS (*)

incisivo s

OPISTODONT

rostro

diostema —

rgo

frontales la 9 e

sutura- nea

frontal sutura -

fontanela ntalporietal

parietales PROODONT

Fig. 1.— Explicaciones generales. Fig. 2.— Posición de incisivos.

l Incisivos sin forma roedora; sin diastema; molares sin

superficie masticatoria; dentadura carnívora presente (Fig.

O E ES A, 2

1” Incisivos con forma roedora; diastema presente; molares

con superficie masticatoria; dentadura carnívora ausente

EPS VUESAI DOS. bos. oso. laico... DAL... 5

2 Cráneo corto, ancho, hocico no alargado (Fig. 3) ...............

DOOR. .OUNLO.. Ab. .220..06..2OYISIOEL. 20D... ME Chiroptera

2 Cráneo prolongado, hocico alargado (Figs. 4-6) mmm...

¡Dissslom..20l..ab..adsco...leb..aldab..lab..2htm 3 Marsupialia

FIG.X 5

(*) Las figuras cuyas referencias en la clave no indican alteración de ta-

maño (ej. X 2), muestran el tamaño natural.

an A

Un espacio ancho (más ancho que el premolar uno) en

el maxilar entre canino y premolares; mandíbulas con in-

cisivos marcadamente prolongados y salientes en dirección

herizontal (lg. 2) menos Rhyncholestes raphanurus Osgood

Sin el mencionado espacio y sin desarrollo marcado de

los-JnCISIVOS” de La MOMIA cnica LENA 4

En el maxilar un espacio entre incisivo uno e incisivo dos;

el canino de la mandíbula mayor que los dientes vecinos

A O A E Ls PR e Marmosa elegans (Waterhouse)

Sin el espacio mencionado, canino de la mandíbula no

mayor que los ¡dientes vecinos (Fig. 6) 'ludnmcincioie id dede

ree Arta Las. Me Dromiciops australis (Philippi)

dano dl

Figs 6 a b

(1) En el maxilar, detrás de los grandes dientes roedores,

dos pequeños dientes; maxilar con seis molares a cada

lado, en la mandíbula cinco a cada lado (Fig. 7, X 0,4)

6 Lagomorpha

Maxilar con dos incisivos, no más de cuatro molares a

A A A ON 7 Rodentia

Coanas más del doble del ancho de los molares (Fig.

RE A oo os AI Lepus europaeus Pallas

Coanas menos ancho que el doble de los molares (Fig.

PDA A AAN Oryctolagus cuniculus (Linné)

(5) Tres molexes por hilera... Eolo Pl 21 Muridae

Cuatro. amelares por “hilerg erat 8 Caviomorpha

Hileras de molares superiores dispuestas en arco (Figs.

RS 0 O e AI O 9

Hileras de molares superiores no arqueadas, casi para-

lelas (Figs. 13, 14h. dnd da aora IA A 12

10'

Pliegues de esmalte de los molares muy acentuados (Figs.

e al a E Al BI e CE BE AO O. TN 11

Pliegues de esmalte de los molares reemplazados por es-

O o a le o lo MO Qu) O AM o A A no 10

a b a

Fig. 10.—Fila derecha molares

superiores, fila izquierda mola-

res inferiores.

Longitud de la hilera molar mayor de quince milímetros

O re a O oras Lagidium viscacia (Molina)

Longitud de la hilera molar menor de quince milímetros

e prod PIO LS 2 y A E AA Chinchilla lanigera (Molina)

(9) Un pliegue externo en medio del premolar superior

a A AAA

e a RIO Caviella australis (Geoffroy 4 D'Orbigny)

Un pliegue externo en la parte posterior del premolar su-

ate Ao AA A Cavía tschudii Fitzinger

(8) Superficie de los molares superiores formando un ocho

aparente o poco (Fig. lla-i); molares no aumentan pos-

teriormente; ¡cráneo poco: VOLUMINOSO eicticiaiocnaniocinmerrrreneinianesas 13

Superficie de los molares superiores sin diseño en ocho;

molares aumentan de tamaño posteriormente; cráneo vo-

MOS AA, O old Myocastor coypus (Molina)

Fig. 11.— Arriba molares superiores de la fila derecha, abajo molares inferiores

de la fila izquierda a—Aconaemys fuscus b—Octodon degus c—

Octodon lunatus d—Octodon bridgesi e— Octodontomys glirioides

t— Spalacopus cyanus s—Ctenomys maulinus h— Abrocoma ci-

nerea i—Abrocoma bennett:.

Diseño en ocho de los molares como cifra simétrica (Fig.

llave: dh / 10lalaoa..AÍ0d.A.1A..QLISIZa..QURARa.Eso 14

Diseño en ocho de los molares superiores irregular y co-

mo ¿cifra asimétrica.(Fig:d lb; 6d, 19) ab. alniluageA..(. 18

Conductos radiculares de los incisivos superiores muy de-

sarrollados, alcanzando hasta el segundo molar (Figs.

NE O A E a iaa Spalacopus cyanus (Molina)

Conductos radiculares nunca alcanzan hasta el segundo

molar

Fig. 12 Fig. 13 Fig. 14

Rostro aplanado lateralmente, marcadamente largo y an-

gosto; tercer molar más largo que los otros molares (Fig.

3 a sluts. 6h. all. co nor arras 16

Rostro robusto, ancho, corto; tercer molar reducido (Fig

EAS E A E ES EAN 17

Suturas frontoparietales contactan en ángulo obtuso; plie-

gues de esmalte anteriores de los molares superiores más

delgados que los posteriores (Fig. 11h) cnc

Ol EE A > PA Abrocoma cinerea Thomas

Suturas frontoparietales contactan verticalmente, pliegues

de esmalte delanteras no más delgadas (Fig. 1li) ...............

MOS AAA Abrocoma bennetti Waterhouse

(15) Pliegues de esmalte casi juntas en la mitad de los

molares (Figs. lla, 14) .......... Aconaemys fuscus (Waterhouse)

Phégues nunca se juntan Aibig. lle) ...............¿Prgooroccrccormerencss

e. A Octodontomys glirioides (Geoffroy $ D'Orbigny)

(13) Molares superiores en forma de semiluna; M? redu-

cido, sin dobles pliegues de esmalte (Fig. 1lg) ....................

O 2. AAA A A Ctenomys spec. Blainville

Molares superiores sin forma de semilunas, en el lado in-

terno con dos pliegues de esmalte (Fig. 1llb-4) .u..m........... 19

M* falciforme, lado interior sin incisión (Fig. 11c)...............

AA A A A Octodon lunatus Osgood

OR 20

M*? no falciforme, lado interior con incisión

ir.

20 Pliegue interno del M* muy poco revelado (Fig. 11b) ..........

A AA Octodon degus (Molina)

20 Pliegue interno del M* bien marcado (Fig. 11d) ...................

E TA A A O Octodon bridgest Waterhouse

E |

Fig. 15 Fig. 16

21 (7) Molares con tres filas de tuberculos (Fig. 15) ...........n

A O E LP A A 22 Murinae

21” Molares con pliegues de esmalte (Figs. 18, 19, 24) ............

a E 24 Cricetinae, Microtinae

22 Incisivos del maxilar superior con un rebaje interno en

el «extremo. (Fig. 116, 1x4) PARQUE Mus musculus Linné

225. "No. como el antenor Pia. 1 AD IO 23

23 Crestas craneales circunscriben una superficie elipsoidal

A a 00 NS MARTA ESC OA Tits Eds. Rattus rattus (Linné)

23 Crestas craneales circunscriben una superficie subexago-

nal Pia. Mba der Rattus norvegicus (Berkenhout)

5 mm

(21) Cráneo muy grande; longitud de las hileras molares

entre catorce y diecisiete milímetros; pliegues de esmalte

como'microtinas (Pig. 18) titi, Ondatra zibethica (Linné)

Cráneo no muy grande; hileras molares menores de diez

Os are: LOSA >... ortarcereresscosinliaioe nO La gel aca JAS,

Cara anterior de los incisivos superiores SUTCATOS mmcccccinancaco 26

A A A 31

d e f g h

Fig. 19.— Arriba molares superiores de la fila derecha, abajo molares inferiores

de la fila izquierda a—Irenomys tarsalis +.—Euneomys chinchi-

lloiddes c—Reithrodon auritus d—Chinchillula sahamae e — Phy-

llotis darwini t—Phyllotis micropus 9—Phyllotis sublimis h—

Phyllotis boliviensis.

260"

Pliegues de los molares superiores formando triángulos

o A AA A Irenomys tarsalis (Philippi)

AieQuesi o tormian ongulos anni iden 27

Pliegues de esmalte de los molares superiores dispuestos

seriadamente como costillas (Fig. 19b, c) (Animales del

E A A A AS RA 28

Pliegues normales y libres (Fig. 19d) (Animales del Norte

Si pi) PR A AMAS E RIE LO, 29

29:

Suturas frontoparietales acortadas; M? de contorno are-

dondeado» (Figs: 19h; 20 HMexilizr.alalziónib. Eon sus

dd nasa dis ADO Euneomys chinchilloides (Waterhouse)

Suturas frontoparietales contactan formando un ángulo li-

geramente obtuso; M? no redondeado (Figs. 1l9c, 21) ..........

erre COROS. ROOTS Reithrodon auritus (Desmarest)

(27) M* mayor que el M?, con tres pliegues externos y dos

Lago a MO O A Neotomys ebriosus Thomas

M?* menor que el M?, con menos de tres pliegues externos

TT dos ¿Morros ii A AN 30

M*? con un pliegue externo y uno interno (Figs. 19d, 22)

Mo O O ES Aa — 0 CAS, Chichillula sahamae Thomas

M* con dos pliegues externos y uno interno (Fig. 19g) .....

E otr to o rd lla oros Phyllotis sublimis Thomas

(25) Dibujo de los pliegues de esmalte regular, sin pliegues

adicionales de segundo grado (dientes viejos sin marcas

rudimentarias de éstos) cráneo generalmente ancho y fuer-

te (PFigs.c019dih/ D4eth) pri! entifizos omo SISI DIAS: 32

(e)

[wy

Fig. 24.— Arriba molares superiores de la fila derecha, abajo molares inferiores

de la fila izquierda a—Akodon olivaceus b— Akodon lanosus c—

Akodon longipilis d—Oryzomys longicaudatus e—Notiomys val-

divianus t—Notiomys megalonyx sS—Notiomys macronyx h—

Eligmodontia elegans.

31" Dibujo de los pliegues de esmalte irregular, con pliegues

adicionales de segundo grado (dientes viejos con mar-

cas rudimentarias de éstos); cráneo delicado y estrecho

ide EEN lirrendeallide .... ieaarecd Malla rd Tie a 40

32 M* muy pequeño, equivale a la mitad de M?; frente nota-

E O A A at CC A 33

32 EMP nás grande; frente no Muy ¡AMCHA: encantan 34

37'

M* representa casi forma de cruz; largo de filas molares

aproximadamente cuatro milímetros (Fig. 24e) cco...a.ocaacoannano

Ml Y ARE 1 A. EA A Notiomys valdivianus (Philippi)

M? en forma de T; largo de filas molares aproximadamen-

te cinco. milímetros (ig. ¿240 al, io pl

DE o. IO O ae, CRI en Notiomys megalonyx (Waterhouse)

(32) Frente ligeramente hundida hacia la línea media; crá-

neo muy pequeno (Elga 240) lau Neo lor Toreo

Ps (en el norte de Santiago) Eligmodontia perulus (Philippi)

pe A (en el sur de Santiago) Eligmodontia elegans Allen

Frente arqueada transversalmente, raras veces plana; crá-

neByno MUY? pSñuUenO ia 35

Frontales-poco ensanchados posteriormente; suturas fron-

toparietales forman un ángulo recto o agudo; hileras mo-

lares mayores de siete milímetros de longitud; M* con dos

raíces (Figk..1%,. 22 idas Chinechillula sahamae Thomas

Frontales bastante ensanchados posteriormente; suturas

frontoparietales forman un ángulo obtuso; hileras mola-

res menores de siete milímetros; M*' con más de dos raí-

e ÓN 36

Suturas frontoparietales orientadas en ángulo recto, con-

tactan en posición casi vertical; M* equivale a lo más a

dos tercios del. MEMES. 24 Lidl tó CS

LEN. OR PO E EIA, Y O) Notiomys macronyx (Thomas)

Suturas frontoparietales en forma arqueada, contactan en

ángulo obtuso; M* mayor que los dos tercios del M? .............. 37

M* con un pliegue interno y uno externo, frecuentemente

en forma anular (en animales viejos desaparece primero

el pliegue externo y a veces también el interno (Figs. 19e,

2 ie tae Phyllotis darwin: (Waterhouse)

M*? con un pliegue interno y dos externos (en animales

viejos quedan a menudo el pliegue interno y uno externo)

pa o 1 RA

38'

41"

da=

FIG ZO Fig. 26 EJ Z Rh

M3 compuesto de tres conjuntos, que con el desgaste se

simplifican en dos pliegues externos y uno interno (ilo-

gando en los viejos a un pliegue único externo e interno)

(Bi... .191) (sólo en, el! sur de. Santiago) miis mmm

SN tenen sol iia Phyllotis micropus (Waterhouse)

M3 más simple, no como el anterior (sólo desde Santiago

DS at a tm Me lied dl co 39

Superficie de los incisivos ligeramente irregular, orto- o

opistodonte (Figs. 2, 199) ................... Phyllotis sublimis Thomas

Superficie de los incisivos lisa, proodonte, raras veces orto-

dente WElgs..2, LIA) cocitccanióón Phyllotis boliviensis (Waterhouse)

(31) M* muy pequeno, equivale a la mitad del M?, cruci-

(Sue. CA E LL e AO ASIA. 41

NPmaya, de MOT Redonda ccoo emmcaranersrrterreri aires 42

M* representa casi la forma de cruz; largo de las filas

molares aproximadamente cuatro milímetros (Fig. 24e) ....

A A Notiomys valdivianus (Philippi)

M? en forma de T; largo de las filas molares aproximada-

ae lia o eo pl A ON

EA META ONO dl Notiomys magalonyx (Waterhouse)

(40) Suturas frontoparietales contactan verticalmente (Figs.

a a io cotión Notiomys macronyx (Thomas)

Suturas frontoparietales contactan en áÚngulO emiicicioiinianaos 43

fetos

46'

(1)

(2)

(3)

Frontales no o poco ensanchadas posteriormente, las su-

turas frontoparietales se prolongan hacia atrás como una

uña aguiforme; pseudocoanas palatinas forman un óvalo;

M*? .muy diferenciadov(Figsa" 24d, 1258/4.10. 2. DAL

PS TA E ME AE Oryzomys longicaudatus (Bennett)

Frontales notablemente ensanchadas posteriormente, sutu-

ras frontoparietales en arco, no como el anterior; pseudo-

coamas palatinas comprimidas lateralmente; M?* menos di-

ferenciado, casi siempre de forma anular mcaooc.ococcanonarconaonenemsese 44

Cráneo ligeramente convexo frontalmente (Fig. 27a) ............. 45

Cráneo rectilíneo frontalmente, no convexo (Fig. 27b) .......... 47

Ortodontes, casi proodontes; nasales y premaxilares alar-

gados sobrepasando los incisivos notablemente; cráneo

suavemente convexo en la frente (Figs. 2, 24D) .0000...c........

e dr O A. EOS QUO Akodon lanosus (Thomas)

Opistodonte, casi ortodonte; nasales y premaxilares me-

nos alargados sobrepasando los incisivos poco o no;

cráneo marcadamente convexo en la frente (Fig. 2). ............ 46

Suturas frontoparietales se prolongan ligeramente hacia

atrás, en forma de una punta (1) (Figs. 24a, 28) .............. 3

ARM oO: DNI Akodon xanthorhinus (Waterhouse)

Suturas frontoparietales no como la anterior, sin punta (2)

a e rai a Akodon olivaceus (Waterhouse)

A e. de de Akodon andinus (Philippi) (3)

(44) Cráneo robusto, ortodonte casi opistodonte; hileras

molares mayores de cuatro milímetros; M* en forma anu-

lar (Fig. ME) 24. Akodon longipilis (Waterhouse)

Cráneo débil, ortodonte casi opistodonte; hileras molares

menor de cuatro milímetros; M* sin forma anular (Fig.

24b) (en Magallanes) ..............cca.ccn... Akodon lanosus (Thomas)

(norte de..Pt. ANSERIT.. micaela Akodon sanborni Osgood

En la población de Tierra del Fuego austral falta esta punta.

La población del norte de Santiago tiene indicios de una punta.

Con el material presente no se puede hacer diferenciación entre Akodon

olivaceus y Akodon andinus.

pa. 200

MSN

Mandíbulas izquierdas (tam. nat.) 1].— Abrocoma benneltti 2.— Abrocoma cinerea 3.— Aconae-

mys fuscus 4. — Spalacopus cyanus 5.— Octodon degus 6.— Octodon lunatus 7.— Octodon

bridgesi 8.— Ctenomys maulinus 9.— Cavia tschudii 10.— Rattus rattus 11.— Rattus norve-

gicus 12.— Mus musculus 13.— Oryzomys longicaudatus 14.— Akodon olivaceus 15.—Ako-

don xanthorhinus 16.— Akodon loengipilis 17.— Akodon lanosus 18.— Notiomys valdivianus

19.— Notiomys macronyx 20.— Notiomys megalonyx 21.— Eligmodontia elegans 22.— Phyllotis

darwini 23.— Phyllotis micropus 24.— Irenomys tarsalis 25.— Reithrodon auritus 26.—

Euneomys chinchilloides.

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1958. Selektionswert der Simplex Zahnform bei der Feldmaus? Zool. Jb.

(Syst.) 68, 35-40. *

hr ¡a

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, EL

20 DE DICIEMBRE DE 1973.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

CAsIiLLA 301 — CONCEPCIÓN

CH TIE

GAYANA

ET O" DE BIOLOGIA

ZOOLOGÍA 1973 No 28

BIOLOGIA DEL PIURE (PYURA CHILENSIS MOLINA

1782. CHORDATA, TUNICATA, ASCIDIACEA).

Por

GUIDO CEA C.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

INSTITUTO DE BIOLOGÍA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR : Mario Alarcón A.

EDITORES

Mario Alarcón A. Lajos Biro B.

Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

NS a O. DE, BLOLOGIA

ZOOLOGIA Ad No 28

BIOLOGIA DEL PIURE (PYURA CHILENSIS MOLINA

1782. CHORDATA, TUNICATA, ASCIDIACEA).

Por

GUIDO CEA C.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

BIOLOGIA DEL PIURE (PYURA CHILENSIS MOLINA 1782.

CHORDATA, TUNICATA, ASCIDIACEA)

GUIDO CEA C. (*)

RESUMEN

Sobre la base de muestras quincenales de Pyura chilensis Molina, 1782

(Chordata, Tunicata, Ascidiacea) y observaciones en acuarios de la Estación

Experimental de Biología Marina de la Universidad de Concepción en Caleta

Leandro, Tumbes, Bahía de Concepción, Chile (36? 38' 36” Lat. S. y 73? 05' 24”

Long. W,) en 1968-1969 se efectúa un estudio de diversos «aspectos bioló-

gicos de esta especie que incluyen:

1.—

(»)

La descripción anatómica e histológica de las gónadas poniendo énfasis

en la gametogénesis. Ambas observaciones permiten distinguir cuatro

estados de madurez sexual,

El análisis estadístico de las muestras el cual permite concluir que los

estados de madurez sexual están presentes durante todos los meses de

muestreo, con distinta frecuencia. Aparentemente es la elevación estival

de la temperatura del mar la que condicionaría la madurez sexual y

puesta en esta especie. Esta última ocurre principalmente en Diciembre

y Febrero, épocas en que existiría la mayor floración de plancton en la

Bahía de Concepción. Estas épocas de puestas originan dos generaciones

en la población, una de Primavera y otra de Verano, formadas por dis-

tintos grupos de tamaño-edad, deducido de los parámetros peso seco y

tamaño (expresado en ml.). El crecimiento de estas generaciones se

puede trazar en el demograma mensual de frecuencia, cuya estructura

constantemente es trimodal, observándose que éste ocurre principalmente

en Primavera-Verano deteniéndose en Invierno. La duración del ciclo

de vida para ambas generaciones fue calculado en 28 meses para la

generación de Primavera y en 30 meses para la de Verano, datos que

podrían ser de valor en una futura explotación racional de P. chilensis

para el consumo alimenticio humano u otros fines.

Prof. Auxiliar del Departamento de Biología Celular. Instituto de Biología. Universidad

de Concepción.

3.—Los resultados de algunas observaciones y experiencias etológicas y fi-

siológicas efectuadas en animales mantenidos en acuarios, complementa-

das con observaciones directas del medio ambiente natural, cuyas prin-

cipales características bióticas y abióticas son descritas.

Este estudio incluye además, una revisión bibliográfica y la discusión

de los resultados obtenidos comparándolos con los datos existentes en la

literatura para otras especies de ascidias.

ABSTRACT

A study of various biological aspects of Pyura chilensis Molina, 1782

(Chordata, Tunicata, Ascidiacea) on the bases of fortnight samples of this

species and observations in the aquaria of the Estación Experimental de

Biología Marina de la Universidad de Concepción at Caleta Leandro, Tum-

bes, Bahía de Concepción, Chile (36? 38" 36” Lat. S. and 73* 05' 24” Long. W.)

during 1968-1969, is made. This study consists of the following subjects:

1.— The anatomical and histological description of the gonads with emphasis

on the process of gametogenesis. Four stages of the sexual maturity are

recognized.

2.— Based on the statisticals analysis of the samples it is possible to conclude

that all sexual maturity stages were present during the period of sampling

with different frequencies. It is likely that the sexual maturity and breeding

of this species is controlled by the temperature of the sea. The breeding

seasons occur mainly in December and February when the greatest con-

centration of plankton are known to exist in the bay. These two breeding

seasons originate two generations in this population: the spring gene-

ration and the summer generation made up by different size-age groups

as deduced by the parameters dry weight and size (expressed in ml.). The

growth of the two generations can be traced in the monthly frecuency

demograms, wich are constantly trimodal. The greatest rate of growth

appears to occurs during the spring and summer months and it is de-

pressed during the winter months. The life-span was calculated at 28

months for the spring generation and 30 months for the summer generation.

Given of value of P. chilensis as human food in our country the data here

presented could be valuable in the future rational exploitation of the

species.

3.— The results of ethological and physiological observations, and experiences

made on animals mantained in aquaria, complemented with direct obser-

vations in their natural environment, whose major biotic and abiotic

features are also described.

This study also includes a bibliographical revision as well as a discussion

of the results as compared with to other ascidians species.

INTRODUCCION

Pyura chilensis Molina, 1782 (Phyllum Chordata, Subphyllum

Tunicata, Clase Ascidiacea), denominado popularmente “piure” o

"pibre” es una de las especies más conocidas vulgarmente en Chile

por ser comestible y es quizás el tunicado, de importancia econó-

mica, que menos se ha mencionado en la literatura mundial, con-

trariamente con lo que sucede con muchas de las especies ex-

tranjeras que han motivado abundante y variadas investigaciones.

En el presente trabajo se ha estudiado una población de Pyura

chilensis en Caleta Leandro, Tumbes (Chile), abarcando varios

aspectos de su biología tales como: anatomía e histología de las

gónadas, madurez sexual, crecimiento, ciclo de vida, etología y

algunos factores abióticos y bióticos que actúan sobre la pobla-

ción. Con esto se pretende hacer un aporte al conocimiento de la

fauna nacional, tan necesario desde el punto de vista científico

puro, como didáctico y más aún, desde aquel de la aplicación

práctica que los resultados entregados pudieran tener, consideran-

do que en nuestro país muchos de los recursos naturales renova-

bles son explotados en forma irracional por desconocimiento. En

efecto, la explotación de P. chilensis para el consumo alimenticio

humano ha aumentado considerable e indiscriminadamente en los

últimos años llegando a cerca de 5.000 toneladas en 1968, según

el control efectuado en las inspectorías de la División de Pesca del

Servicio Agrícola Ganadero.

Deseo dejar constancia de mis sinceros agradecimientos al Prof.

Dr. Víctor A. Gallardo y Prof. Srta. María T. López por sus inapre-

ciables sugerencias, sin las cuales este trabajo dificilmente se habría

llevado a efecto.

MATERIALES Y METODOS

Obtención y Composición de las Muestras.

En el área de muestreo que se describe más adelante, se to-

maron 28 muestras periódicas quincenales, sobre una población de

P. chilensis, desde Febrero de 1968 hasta Marzo de 1969 (Tabla 1).

Los muestreos fueron efectuados mediante buceo autónomo con

una duración aproximada de 30 minutos cada uno. El volumen

estándar de cada muestra fue de 20 litros.

Procesamiento de las Muestras.

Los ejemplares fueron removidos del sustrato rocoso al cual

se encuentran fijos, mediante un gancho de acero en forma de

espátula para no dañarlos. Los ejemplares así recolectados fueron

sometidos al siguiente tratamiento:

1.— Narcotización con cristales de mentol, que agregados al agua

de mar producen relajación muscular y apertura de los sifones.

2.— Fijación con formol neutro al 4% en agua de mar.

3.— Separación de los ejemplares de los bloques y remoción de

la túnica mediante pequeñas tijeras.

4.— Determinación de la madurez sexual abriendo cada ejemplar

por su línea media anterior comenzando desde el sifón inhalan-

te. Al levantar la cámara branquial se puede apreciar el as-

pecto de la gónada derecha y determinar su grado de madurez,

comparándola con una escala previamente confeccionada. Este

procedimiento permite también la eliminación de líquidos des-

de el interior del animal que pueden interferir en la exactitud

de la medición posterior de su volumen.

5.— Medición del volumen por el desplazamiento de agua de cada

ejemplar con una precisión de 0.1 ml.

6.— Determinación del peso seco pesando cada ejemplar con una

precisión de 0.0001 g. en una balanza Sartourius, después de

24 horas de permanencia a 105"C en una estuía de secado

Chirana.

Métodos Estadísticos.

En el análisis de la población y en la interpretación de los

datos se siguieron las indicaciones de Moroney (1963), Mather

(1966), y Fisher y Yates (1963).

Obtención de Datos Ambientales.

La temperatura del agua durante el período de muestreo, fue

registrada mediante un termómetro Taylor con una precisión de

0.19C, ubicado en el muelle de la Estación Experimental de Biología

Marina de la Universidad de Concepción, en Caleta Leandro.

Técnicas Anatómicas e Histológicas.

Las observaciones anatómicas fueron efectuadas in vivo o en

material fijado, mediante instrumental de disección de uso corriente.

Las observaciones histológicas se realizaron aplicando las si-

guientes técnicas: Hematoxilina-eosina (Davenport, 1964 : 227), Hema-

falo,

"SOLIDNID

on6bsep DPISuDo :5 *“(gugg 'ONPpIA Sp DIG uo Jejsarod pussy 'omususy Á oler] “ojususo) son

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GIRA

OYONVIT VITTVO

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vP07018 30 IVINIWNIVIAX3 NOIO

Y1S3 V130 YVW 30 VNOV 30

0143/9V OLINIID 130 VHINOS3

ERA

toxilina férrica de Weigert (Lillie, 1965: 168), Feulgen (Cowdrey,

1946 : 190), Acido peryódico-Shiff (Pas) (Lillie, 1965: 198; Spanhof,

1966 : 24).

Técnicas Etológicas.

Para el estudio etológico se mantuvieron ejemplares en el sis-

tema de acuarios de la Estación Experimental de Biología Marina

en Caleta Leandro (Fig. 1). Se usaron además acuarios accesorios

de plástico de 10 lts. de capacidad, aireados continuamente median-

te una bomba y cantenidos en los laboratorios del Instituto de Bio-

logía.

En el registro de las contracciones sifonales se usó un quimó-

grafo eléctrico Bird, modelo estándar y la cantidad de agua filtra-

da por un individuo se midió usando el aparato bosquejado en la

FiGr 2

Fig. 2.— Esquema del sistema utilizado para medir el volumen de agua fil-

trada por un individuo de P. chilensis Molina, 1782; A.— Entrada de

aire; B.— Entrada de agua de mar; C.— Tubo de salida de agua del

interior del animal; D.— Soporte del tubo C; E.— Acuario; F.— Soporte

para colocar el especimen; G.— Especimen; H.— Recipiente para re-

cibir el agua filtrada y medirla. Las flechas indican la dirección del

flujo de agua.

Instrumental Optico y Fotográfico.

Las observaciones microscópicas fueron efectuadas con micros-

copios binoculares Leitz y Zeiss, este último dotado de condensador

de fases contrastadas. Las fotografías fueron tomadas con los mi-

croscopios ya citados mediante dispositivos microfotográfico adicio-

nal Mikas, con telescopio de enfoque y cámara Leica modelo lil g.,

utilizando película Agía Isopan IF 17 Din 40 Asa. Los dibujos fueron

hechos utilizando un gran aparato de dibujo Zeiss según Abbe.

AREA DE MUESTREO

El área de muestreo está situada en el sector norte de Caleta

Leandro, península de Tumbes en la Bahía de Concepción a 36? 38'

36” Lat. S. y 73? 05' 24” Long. W., aproximadamente bajo 3 m. del

nivel del agua y sobre fondo rocoso (Fig. 3).

El análisis de muestras de este sustrato, efectuado en el De-

partamento de Geología de la Universidad de Concepción, por el

geólogo Sr. Guillermo Alfaro (comunicación personal), dió el si-

guiente resultado: Filita de color gris acero, sedosa al tacto. Blanda,

poco intemperizada. Superficialmente existe coloración café-ama-

rillento producida por la oxidación de minerales de fierro. Existen

pequeñas placas de muscovitas, variedad sericita, dispuestas en

los planos de foliación. Fuertemente foliada, sin agregaciones de

minerales y con fuerte plegamiento (micropliegues). Corresponde a

una roca de metamorfismo regional de bajo grado, semejante al que

afectó las rocas próximas a San Vicente.

Este tipo de roca es la más frecuente en el Complejo Cristalino

de edad precámbrica y/o paleozoica (Galli, 1967 : 29).

Características Ecológicas del Area de Muestreo.

Factores bióticos. — Pyura chilensis se encuentra formando aso-

ciaciones epifaunísticas (1) producidas por gregarismos, en las cua-

les los individuos guardan una relación íntima de contigúidad, fi-

jándose fuertemente unos a los otros por medio de sus túnicas, de

tal manera que muchas veces llegan a confundirse los límites ex-

ternos de éstas. Estas asociaciones epifaunísticas están formadas

por un número variable de individuos de distintos tamaños y se

encuentran tanto en las superficies horizontales como verticales de

las rocas.

(1) Ver definición de Epifauna, Thorson (1957 : 461).

AE E

MIDA

NO/D43 NO)

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BYW 30 VIO

v/9010/9

au Wo TI

Aprovechando todas las irregularidades de las túnicas e inters-

ticios entre los individuos, vive una fauna abundante y variada de

epizoos entre los que parecen predominar los poliquetos y los crus-

táceos. También es posible encontrar algunas especies de algas.

Durante el Verano se produce una gran acumulación de Ma-

crocystis pyrifera Linneo que flota sobre la superficie del agua

en la zona de muestreo o crece en el lugar. La acumulación se debe

al arrastre producido por los vientos del S.W. y S. predominantes

durante la estación del Verano.

Según Rivera (1968 : 9) la abundancia del plancton en la Bahía

de Concepción aumenta considerablemente desde el mes de Agosto

hasta Noviembre, disminuyendo luego hasta Enero, para experimen-

tar en Febrero un incremento mucho mayor y para luego decaer

nuevamente en Marzo. Las variaciones de la cantidad de plancton

y su influencia sobre la población de P. chilensis estudiada son

discutidos más adelante.

Factores abióticos: La población de P. chilensis estudiada es

sublitoral, de acuerdo a la clasificación de los medios marinos de

Hedgpeth (1957: 18) aunque la especie también se presenta en la

zona litoral.

El agua en esta zona se presenta como un medio homotermo

en los meses de Junio y Julio,con una temperatura promedio men-

sual de 11.42€ y con una variación entre la media máxima y la

media mínima mensual de 1?9C.A partir del mes de Septiembre se

eleva la temperatura alcanzando en los meses de Verano alrededor

de 14*C con variaciones de 4-5*C entre las temperaturas máximas

y las mínimas (Tabla Il).

RESULTADOS

Anatomía del sistema reproductor.

Las gónadas de P. chilensis son dos órganos hermafroditas

dispuestos uno al lado derecho y otro al lado izquierdo de la cara

interna del manto. La gónada del lado derecho se encuentra por

su cara externa adosada en toda su extensión a la pared del

manto muscular y su cara interna mira hacia la cavidad peribran-

quial. El margen ventral de la gónada está en contacto con el

Fig. 3.— Ubicación geográfica de la Estación Experimental de Biología Marina

de la Universidad de Concepción y área de estudio en Caleta Leandro,

Tumbes, Bahía de Concepción, Chile.

pericardio. La gónada izquierda a su vez se encuentra por su

cara externa contigua a la pared interna del manto; sus márgenes

están en estrecho contacto con el tubodigestivo desde el esófago

hasta el ano, el que forma un asa alrededor de su margen apical.

Por su cara interna la gónada está en contacto con la glándula

hepática (Fig. 4A y B).

Cada gónada consta de una parte central, el ovario, rodeado

por su cara interna y lateralmente por numerosos sáculos mas-

culinos que corresponden a los testículos (Fig. 4 C).

Los testículos están constituidos por numerosos racimos de tres

o cuatro sáculos, que por medio de un conducto eferente comuni-

can con el espermioducto que corres superficialmente a lo largo de

la cara interna de la gónada desembocando en la cavidad atrial,

donde protruye por alrededor de 1 mm. Los conductos eferentes

pueden comunicar directamente con el espermioducto o unirse a

otros, formando un conducto común que llega al espermioducto

(Figs 46).

El ovario consta de un ovioducto longitudinal central de 4 mm.

de diámetro, cuya cara externa se apoya directamente sobre la

pared del manto. El ovioducto presenta profundos y numerosos

pliegues longitudinales entre los cuales se encuentran extensiones

tubulares laterales. El epitelio germinativo se encuentra ubicado

en el fondo de estas extensiones laterales. En otras palabras, el

ovario está formado por numerosos óvariolos que vacian sus pro-

ductos sexuales directamente al oviducto que desemboca en la

cavidad atrial donde protruye libremente por alrededor de 2 mm.,

para luego terminar en un esfínter muscular (Fig. 4 A y C; Fig. 5A).

Fig. 4—P. chilensis Molina, 1782.— A.— Vista interna (lado izquierdo) de un

individuo al cual se ha removido túnica, órgano faringobranquial y se

ha abierto por su línea medio-ventral; c.t. corona tentacular; t.v. tu-

bérculo vibrátil; c.a. cavidad atrial; gon.d. gónada derecha; gon.i.

gónada izquierda; esp. espermioducto; esof. esófago; est. estómago;

c.e.g.h. canal excretor glándula hepática; g.h. glándula hepática; int.

intestino; v.int. vesículas intestinales; an. ano. B.—Vista interna de

un individuo mostrando la cara externa del órgano faringo branquial:

c.e.b. cara externa del órgano faringo branquial; c.a. cavidad atrial;

gon.d. gónada derecha; esp. espermioducto; an. ano; esof. esófago;

est. estómago; c. corazón; a.v. aberturas del manto que permiten el

paso de vasos sanguíneos hacia la túnica. C.—Sección transversal

de una gónada: esp. espermioducto; c.e. conducto eferente; s.t. sáculos

testiculares; ovid. ovioducto; e.l.o. extensiones laterales del ovioducto;

s.o. sáculos ováricos.

BE: y ASIA

pro S

E Y .

Y Vu

(0)

Y — E

5%, 1)

gon. d.

esp.

Fig. 4

Histología del sistema reproductor.

Testículos

Yendo desde el exterior hacia el lumen cada sáculo testicular

consta de (Fig. 5 B y C):

1) Una delgada cubierta conjuntiva formada por células alar-

gadas y poco definidas, con núcleos ovoides de 4 yu de diámetro.

2) Un epitelio germinativo de grosor variable formado por: a) una

corrida de células esféricas de 4 uy de diámetro en estrecha rela-

ción con contigúidad, que poseen núcleos esféricos granulosos de

3u de diámetro; b) Varias corridas de células esféricas de 3 y de

diámetro con núcleo de 1.5ú de diámetro; c) Células esféricas u

ovoides de 2 y de longitud que corresponden a las espermátidas.

Las espermátidas ubicadas hacia el lumen del sáculo son fusifor-

mes y presentan una cola corta y gruesa. Entre las espermátidas

se disponen regularmente a través de toda la pared del sáculo,

grandes células más o menos esféricas de 9u de diámetro, cuyo

citoplasma es homogéneo y su núcleo poco diferenciado; d) En el

lumen del sáculo se encuentran los espermios ya formados (Cea,

1969-70 : 319).

Los conductos eferentes constan de un epitelio formado por

una sola capa de células cúbicas no ciliadas de 7 y de alto cada

una con un núcleo central y esférico (Fig. 5 C y E). El epitelio

del conducto eferente común, formado por la unión de varios con-

ductos eferentes, es ciliado y continuo con el epitelio del esper-

mioducto y de características similares. La abertura del espermio-

ducto en la cavidad atrial presenta bandas musculares circulares

que actúan a modo de esfínter.

Fig. 5.—P. chilensis Molina, 1782.— Gónadas: A.— Corte transversal de una

gónada: s.t. sáculos testiculares; ovid. oviducto. Feulgen. B.— Corte

transversal del epitelio germinativo testicular; c.c. cubierta conjuntiva;

epg. espermatogonias; esp. espermátidas; c.n. células nutricias (?).

Hematoxilina-Eosina. C.—s.t. sáculos testiculares; c.e. conducto efe-

rente; ep.g.o. epitelio germinativo del ovario. Feulgen. D.— Coducto

eferente; e. espermios. Hematoxilia-Eosina. E.— Corte transversal de

oviducto. Hematoxilina-Eosina. F.— Ovocitos: 1.—estado 1; 2.— estado

2; 3.—estado 3; 4.—estado 4; 6.—estado 6. Feulgen. G.— Ovocitos:

4—estado 4. PAS. H.— Ovocitos: 5.—estado 5. Feulgen. I.— Ovocitos:

6.—estado 6; n. núcleo; ncl. nucléolo; c.fe. células foliculares exter-

nas. PAS.

+ Me

Ovarios

Los ovarios presentan, al igual que los testículos, una cubierta

externa de tejido conjuntivo.

El ovioducto está formado por una sola capa de células cú-

bicas ciliadas semejantes a las del epitelio del espermioducto

(Fig. 5 E). Este epitelio ciliado se continúa en las extensiones tubu-

lares laterales u ovaríolos, en el fondo de los cuales se convierte

en epitelio germinativo. El epitelio germinativo comprende una so-

la capa de células pequeñas alargadas de 4 y de largo, de límites

imprecisos y con núcleos esféricos granulosos de 2 y, que prolifera

alrededor de los ovocitos rodeándolos completamente. Los ovaríolos

se encuentran con ovocitos en diferentes fases de la ovogénesis.

Entre estos se observa una gran cantidad de elementos sanguíneos

dispersos (Fig. 5 E). A continuación se describen:los principales

estados de la ovogénesis:

Estado 1.— Células de 8 uy de longitud, ovoídeas con citoplasma

homogéneo y núcleo esférico granulosos de 2u de diámetro. Res-

ponden en forma positiva a los colorantes nucelocitoplasmáticos.

No se observa nuclóolo. Estas células se encuentran a nivel del

epitelio germinativo y podrían corresponder a las ovogonias (Fig.

5 Fano 60).

Estado 2.— Ovocitos de 15 p de longitud, más o menos ovoídeos

que se diferencian permaneciendo aún a nivel del epitelio germi-

nativo. El núcleo es esférico, granuloso, de 4 y de diámetro y Feul-

gen positivo (Fig. 5 F; Fig. 6 B).

Estado 3.— Ovocitos de 28 p de longitud, ovoídeos, cuyo cito-

plasma presenta una leve afinidad por los colorantes citoplasmá-

ticos corrientes y es levemente Feulgen positivo. Poseen un núcleo

esférico de 7 y de diámetro que reacciona levemente frente al Feul-

gen y que contiene un nucléolo esférico de 3 y de diámetro con pe-

queñas vacuolas en su interior (Fig. 5 F; Fig. 6 C). En estas células

comienza a formarse la capa folicular primaria, observándose en

algunos casos continuidad entre ésta y el epitelio germinativo.

Estado 4.— Ovocitos de 39 un levemente ovoídeos cuyo citoplas-

ma presenta mayor afinidad por los colorantes nucleares, siendo

intensamente Feulgen positivo. Aparecen los primeros gránulos de

vitelo que se tiñen de color rojo brillante con PAS. El núcleo es de

14 de diámetro, levemente teñible y con un gran nucléolo esférico

de 7 de diámetro que presenta vesículas en su interior. Á veces

se observan fragmentos de nucléolo dispersos por el carioplasma

(a. 5 .F y 6 Tia. b DD):

ll.

Estado 5.— Ovocitos de 60 y levemente ovoídeos. Aumenta la

cantidad de gránulos de vitelo y el citoplasma se distribuye entre

estos gránulos tinéndose menos intensamente, aunque continúa su

afinidad por los colorantes nucleares. Poseen un núcleo esférico de

20u de diámetro con nucléolo esférico excéntrico de 9u de diá-

metro, que presenta mayor cantidad de vesículas claras en su in-

terior. Aparecen las primeras células foliculares internas ovoídeas

de 2 a 3u de longitud que se ubican en invaginaciones de la

membrana plasmática. Las células foliculares externas más o me-

nos cúbicas de 4 uy se presentan, en su mayoría, en estado de di-

visión. Entre las dos capas de células foliculares aparece el corion

(Han Hp» Bo. 6 'E).

Estado 6.— Ovocitos de 200 y u óvulos inmaduros. El citoplas-

ma de estas células casi esféricas, está relegado a los espacios

existentes entre los gránulos de vitelo y presenta una suave afi-

nidad para los colorantes citoplasmáticos. El vitelo se encuentra

homogéneamente distribuido en forma de gránulos esféricos de l y

fuertemente coloreables de rojo brillante por el PAS. Presentan un

gran núcleo levemente excéntrico de 77 y con voluminoso nucléolo

de 14 y, también levemente excéntrico. El núcleo presenta poca atfi-

nidad por el Feulgen, mientras que el nucléolo se tiñe fuertemente

rosado con pironina Y, visualizándose en su interior varias vesícu-

las esféricas incoloras de hasta 2 y (Fig. 5 l; Fig. 6 F).

Periféricamente a la membrana plasmática de los óvulos in-

maduros, alojadas en pequeñas invaginaciones formadas por ésta

y dstribuidos en forma discontinua se encuentran las células folicu-

lares internas que alcanzan un tamaño de 6yu, cuyo citoplasma

es Feulgen y PAS negativo. Los núcleos de estas células se tinen

normalmente con los colorantes nucleares.

El corion es una fina membrana de basamento acidófila, en

contacto íntimo con la membrana plasmática de óvulo en aquellas

zonas en que no hay células foliculares internas. A su vez la mem-

brana citoplasmática se hace evidente donde se encuentra sepa-

rada del corion para dejar lugar a las células foliculares internas.

Las células foliculares externas son cúbicas y se ubican sobre

el corion formando una sola corrida de 10 y de alto. Es común en-

contrarlas en carioquinesis (Fig. 5F). La cara externa de cada cé-

lula folicular es semiconvexa. El citoplasma es Feulgen y PAS ne-

gativo.

El óvulo maduro es esférico de color verdoso y de un diáme-

tro total de 225 up. Posee igual morfología que el ovocito en estado 6,

el que a través de un proceso madurativo, con aumento de la can-

tidad de vitelo y de tamaño llega a constituirse en óvulo maduro

(Cea, 199:70.:319).

MAD y

Estados de Madurez sexual.

En P. chilensis se observan cuatro estados de madurez sexual

presentes durante todos los meses del año, cuyas características son

las siguientes:

Estado 1 o de Diferenciación: (Fig. 7 A) Las gónadas muy pe-

queñas están apenas esbozadas. Los sacos testiculares y ováricos

no presentan diferenciación externa. Los epitelios germinativos de

ambos se encuentran inactivos.

Estado II o de Preparación: (Fig. 7 B) Las gónadas se encuen-

tran totalmente flácidas con los sacos testiculares de color blanque-

cino y la región ovárica de color verde pardo claro. El epitelio

germinativo de los sacos ováricos presenta ovocitos en los grados

M2 30y: 2 de la ovogénesis: (Figu-5 FE y Gr Fig. 6. .AjB; E y D).

Estado Ill o de Preovulación: (Fig. 7 C) Las gónadas son más

o menos turgescentes. Los sacos testiculares presentan coloración

amarillo-lechoso intenso. Los sacos ováricos se presentan de color

verde-pardo oscuro. Histológicamente los sacos testiculares se di-

ferencian por presentar gran cantidad de espermios formando fas-

cículos en su interior y los sacos ováricos presentan ovocitos en

los estados 5 y 6 de la ovogénesis (Fig. 5 F, H e l; Fig. 6 E y P).

Estado IV o de Ovulación: (Fig. 7 D) Los sacos ováricos son de

color verde-pardo más oscuro que en el estado III. Se encuentran

llenos de óvulos y en su máxima turgescencia. Muchos de los óvulos

se encuentran en el oviducto. Los óvulos son completamente esfé-

ricos de 225 u de diámetro. Algunos sacos testiculares se presentan

turgescentes y de color amarillo-lechoso intenso igual que en el es-

tado II, pero la mayoría se encuentran vacíos y flácidos, de color

rosado-pálido.

Período de madurez sexual.

En la Fig. 8 se da en porcentajes mensuales las frecuencias

de individuos de los cuatro estados de madurez gonádica. Se in-

dican además los promedios y las variaciones mensuales de la tem-

peratura del agua, obtenidos del registro termográtfico.

Fig. 6.—P. chilensis Molina, 1782.— Ovogénesis: A.— Ovocito en estado 1. B.—

Ovocito en estado 2. C.— Ovocito en estado 3. D.— Ovocito en estado 4.

E.— Ovocito en estado 5. F.— Ovocito en estado 6. ep.g. epitelio ger-

minativo; n. núcleo; nuc. nucléolo; c.f£e. células foliculares externas.

c.f.i. células foliculares internas; co. corion; vi. vitelo.

, TI, PY

EL (00 5

Eig. 7

Al analizar el gráfico de la Fig. 8 se observa que los ejempla-

res en estado 1 presentan las frecuencias más altas en los meses de

Mayo (27.8%), Junio (25.6%), Julio (57.7%) y Agosto (58.6%). Los

ejemplares en estado Il presentan dos máximas: uno en Mayo-

Junio (52.5% y 67.8% respectivamente) y otro en Septiembre (43.8%).

Los individuos en estado Ill presentan un solo máximo en Octubre

(57.7%). Los ejemplares en estado IV alcanzan sus máximos en

Diciembre (60.4%), Enero (74.7%), Febrero (66.5%) y Marzo (60.3%),

disminuyendo notablemente a partir del mes de Abril.

De lo anterior se deduce que el período de madurez sexual

de P. chilensis en Caleta Leandro se inicia en Septiembre, aumen-

tando gradualmente hasta Enero para comenzar a disminuir pau-

latinamente, finalizando en Marzo.

Demograma de Distribución de frecuencias por tamaño.

Los tamaños expresados en volumen, de los 3.408 ejemplares

de P. chilensis muestreados en 1968-69, fueron agrupados en 20

clases de tamaño con un intervalo de clase de 2 ml. Cada clase

está representada por su marca de clase. El demograma de la dis-

tribución de frecuencias aparece en la Fig. 9. En él se observan

tres modas principales durante todos los meses del ciclo estudiado.

La moda de los tamaños pequeños (M-I) permanece estática du-

rante los meses de Enero a Abril en el tamaño 6.5 ml. Desde Mayo

a Octubre se encuentra en el tamaño 9.0 ml. y luego se desplaza

en Noviembre al tamaño 11.5ml. La moda central (M-I1) que corres-

ponde a los tamaños intermedios, es la mayor de las tres modas

del demograma de distribución de frecuencias en todos los meses,

con excepción de Julio y Agosto en que es levemente superada por

la moda de los tamaños pequeños (M-1). La moda central oscila

entre los tamaños 19.6 ml y 26.5 ml., de manera irregular de un

mes a otro. La moda de los tamaños grandes (M-III) es la menor

de las tres modas encontradas durante todos los meses. Oscila en-

tre los tamaños 31.5 ml. y 39.0 ml. Desde Abril a Octubre hay un

marcado desplazamiento de esta moda en el sentido de los tama-

ños menores y ausencia de los tamaños más grandes encontrados

en la población. Desde Octubre a Marzo la moda de los tamaños

mayores se desplaza en el sentido de los tamaños mayores, pues-

to que éstos están presentes en la población.

Fig. 7.—P. chilensis Molina, 1782.— Estados de madurez sexual: A.— Gónada en

estado I. B.— Gónada en estado II. C.— Gónada en estado III. D.— Gó-

nada en estado IV. Los individuos se muestran abiertos por la línea

medio ventral. s.i. sifón inhalante; s.e. sifón exhalante; tb. tentáculos

bucales; a.pc. arcos pericoronales; t.v. tubérculo vibrátil; a. ano; esol.

esófago; est. estómago; g. gónada; raf. rale,

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El desplazamiento irregular de las modas en el demograma

de distribución de frecuencias y a veces la aparente inmovilidad

en el tiempo que presentan, no permiten establecer el crecimiento

de los individuos y la duración de su ciclo de vida. Considerando

estos hechos se sospechó la existencia de grupos de tamaño-edad

mezclados que producirían interferencias entre ellos, entendiéndose

por grupos de tamaño-edad conjuntos de individuos comprendidos

entre ciertos rangos de tamaño y peso seco existentes en la pobla-

ción en uno de los estados de madurez sexual, durante un espacio

definido de tiempo, formando una de las modas o parte de una de

las modas del demograma de distribución de frecuencias.

Variación mensual del tamaño y peso seco.

En la Fig. 10 se han graficado los promedios mensuales de

tamaño y peso seco de P. chilensis. Además se incluyen las va-

riaciones mensuales del plancton según datos de Rivera (1968: 9)

para la Bahía de Concepción. Se puede observar en este gráfico

que el peso seco (línea cortada) decrece desde Febrero a Mayo

(3.10 g.), experimenta un leve aumento en Junio (3.28 g.) y decae

a los valores más bajos en Julio (2.88 g.) y Agosto (2.81 g.). A

partir el mes de Septiembre, se eleva nuevamente alcanzando su

valor máximo en Febrero (5.33 g.).

Los promedios mensuales de tamaño (expresado en volumen)

experimentan variaciones en igual sentido que los promedios de

peso seco. Así se tiene el menor valor en Julio (12.69 ml.). A partir

de Agosto se eleva el tamaño medio, alcanzando en Febrero el

valor máximo (21.82 ml.).

Las variaciones mensuales de tamaño y peso seco de los in-

dividuos son discutidas más adelante, en relación a las variaciones

del plancton.

Relación tamaño peso seco (Estacional).

En la Fig. 11 se han graficado los promedios de peso seco de

cada tamaño por estación (Verano: Diciembre, Enero, Febrero; Pri-

mavera: Septiembre, Octubre y Noviembre; Otoño: Marzo, Abril y

Mayo; Invierno: Junio, Julio y Agosto). Se obtuvieron regresiones

lineales significativas en las cuales se observa lo siguiente: En el

Fig. 10.— Curvas de los promedios mensuales de tamaño (ml.) y peso seco (g.)

de la población de P. chilensis Molina, 1782 de Caleta Leandro, Tum-

bes, Chile 1968-69. Curva de la variación mensual del volumen (ml.)

de plancton colectado en 1965-66 en la Bahía de Concepción (ver

Tabla VI).

VOLUMEN MENSUAL DE PL ANCTON

de 03 pboBsdao iso) ¿Budo e 28

o 1” o

TAMAÑO (Volumen)

VOLUMEN DE PLANCTON

PESO SECO

y 9 o o o a o o

dd poo NS INS

093S 0S3I4 30 TONSNIH 0I03INOY4I

Fig. 10

trimestre de Verano la regresión (p > 0.001) indica que a partir

del tamaño 9.0 ml. la población aumenta de peso. En el trimestre

de Primavera la regresión es paralela a la observada en el Verano

(p > 0.001). En Otoño la regresión (p > 0.001) corresponde a los

valores de peso más bajos encontrados. Sólo en los tamaños más

pequeños, 1.5 ml. y 40 ml. supera ligeramente a la relación de

Primavera. En Invierno la recta de regresión (p > 0.001) es para-

lela a la de Otoño, pero con valores superiores y su inclinación es

tal, que a partir del tamaño 24.0 ml. es superada por la relación

de Primavera.

Los valores para la ecuación de la recta de cada trimestre son:

Verano: y = 493 + 0:18 (x — 25.25)

Primavera: y = 407 + 0.172 (x — 24.00)

Otoño: y,/= 440.+ 0.15 (x — 25.25)

Invierno: y ="»330. + 0.15 (x — 21.50)

Relación tamaño - peso seco - madurez sezual.

La Fig. 12 representa la frecuencia mensual de individuos de

P. chilensis en los distintos estados de madurez sexual y los pro-

medios de peso seco según tamaño, datos que nos servirán en la

interpretación de las relaciones que continúan.

En la Fig. 13 se han graficado para cada tamaño los prome-

dios de los pesos secos según el estado de maduración de las gó-

nadas. Existe una relación lineal para los individuos en estado l

grupo A (p > 0.01) que abarca los tamaños 1.5 ml. a 21.5 ml. (Fig.

14). La ecuación de la recta es la siguiente:

y += 117 + 011 (x — 11:50)

este grupo está presente durante todos los meses del año y sus

promedios de peso (Fig. 15) experimentan alzas en los meses de

Mayo (1.43 g.), Agosto (1.46 g.) y descensos en los meses de

Marzo (0.63 g.), Junio (0.91 g.) y Octubre (0.51 g.).

En la relación tamaño peso seco de los individuos en estado Il

grupo B, existe una regresión lineal desde 1.5 ml. asta 21.5 ml.

(p > 0.001) que se interrumpe en los tamaños 24.0 ml. y 26.5 ml.,

los cuales experimentan bruscas alzas de peso, decreciendo hasta

los 34.0 ml. (Fig. 13 y Fig. 14). Por otra parte vemos en la Fig. 13

que los tamaños 26.5 a 34.0 ml. tienden a bajar de peso en Invierno

y aparecen solamente en los meses de Mayo a Agosto (Fig. 12).

Fig. 11.—Rectas de regresión lineal de los promedios de peso seco (g.) esta-

cionales (trimestrales) por tamaño (ml.) de la población de P. chilensis

Molina, 1782 de Caleta Leandro, Tumbes, Chile 1968-69 (ver Tabla VII).

(U3WNIOA) ONVWVL

-¡w 089 SD) 07) SI) 66€ SIE 07€ SIE 062 S9Z 092 SIZ 06! SH 09 SU 06 S9 09 SI

(00 92 "X) 10 +L09=4 *+=== (A0NA190"d9S)VITAVWISA

(0S 12 "X)S10+0€8E=4 ver (Sy A Pr unr)ONIFIANI

(SST =X) S10+099=4 == (XDWXI1QY"1DWN) ONOLO

(ST ST -*)BLO+E657=4 0 (93 X'UZ"90) ONVIZA

9935 08d 30 SOIOUINOYA

Pig.

pe es.

Evidentemente existirían dos grupos en estado ll: uno el gru-

po B que abarca los tamaños 1.5 ml. a 21.5 ml. cuya relación ta-

maño-peso seco es una regresión lineal significativa y cuya ecua-

ción de la recta presenta los siguientes valores:

y ¡=,244 + bird: == 14/59)

y cuyos aumentos de peso (Fig. 15) están en los meses de Mayo,

Agosto y Febrero (2.87 g., 2.86 g., 2.89 9.) y los descensos en Junio,

Octubre y Enero (2.19 g., 1.26 g. y 0.88 g.).

El otro grupo, grupo B', que comprende los tamaños desde

24.0 ml. hasta los 34.0 ml., no presenta ninguna relación. Sus pesos

(Fig. 15) varían desde los 4.80 g., en Mayo, hasta 3.90 g. en Agosto.

Para el total de los puntos graficados en estado lll no existe

regresión significativa (Fig. 13). Sin embargo, considerando que los

tamaños superiores a 29.0 ml. se encuentran sólo en los meses de

Invierno y que los tamaños menores se encuentran durante todos

los meses del año (Fig. 12), se han separado dos grupos: el grupo €

que comprende los tamaños 6.5 ml. a 26.5 ml. (p > 0.05) y el gru-

po C* formado por los tamaños 29.0 ml. a 41.5 ml. (p > 0.05). Se-

paradamente en ambos grupos la relación tamaño-peso seco re-

sultó ser una regresión lineal significativa y además significativa-

mente distinta (p > 0.001) (Fig. 14). Los valores de la ecuación

de la recta son los siguientes:

Grupo CC y. 322 + 016. (% == 16050

Grupo ¿C7/' y/(=" 5.39: ++ 0:01 (x" —>" 35.23)

Las alzas de peso en el grupo C aparecen en Mayo, Julio y

Noviembre (4.26 g., 3.65 g. y 3.44 9.) y las bajas en los meses de

Junio, “Octubre y Enero (2.65, g., 2.95 q. y.2.19 q), (Pie PAS

grupo C' presenta alzas de peso en Junio (5.50 g.), cuando todos

los grupos anteriores bajan y Septiembre (5.42 g.); el peso más

bajo se observa en Mayo (4.30 g.) (Fig. 15).

Para el estado IV el total de los puntos obtenidos en la rela-

ción tamaño-peso seco presentan una regresión lineal significativa

(Fig. 13). Sin embargo, analizando el estado gonádico por tamaño

(Fig. 12), se observa que los individuos cuyo tamaño es superior

a los 39.0 ml. comienzan a desaparecer en los meses de Invierno,

demostrando qué constituyen una parte residual de la población

que probablemente crece más. Por esta razón la regresión se ha

fragmentado arbitrariamente en dos. Ambas regresiones resultaron

independientemente significativas (Fig. 14), pero contrariamente a

lo observado en los casos anteriores, estadísticamente no presentan

diferencias entre ellas. Esta decisión que parece arbitraria a pri-

mera vista, queda garantizada al observar el demograma de fre-

cuencias (Fig. 9).

Así tenemos en estado IV el grupo D que abarca los individuos

entre 11.5 ml. a 36.5 ml. (p > 0.001) y el grupo D' compuesto por

los ejemplares entre 39.0 ml. a 49.0 ml. (p > 0.001) (Fig. 14).

Estos siete grupos de tamaño-edad (A, B, B', C, C”, D y D') de

P. chilensis comprenden los cuatro estados de madurez gonádica

observados en la población de Caleta Leandro.

El grupo A corresponde a individuos en estado 1. Probable-

mente también corresponde a dos grupos de tamano-edad muy

próximos, temporalmente entre sí y muy homogéneos en su estruc-

tura ya que se trata de juveniles que están incorporándose a la

población. Por este motivo los valores promedio de peso seco para

cada tamaño corresponde a una regresión lineal significativa.

En cada uno de los estados Il, III y IV existirían dos grupos

de tamaño-edad. El tamaño máximo que alcanzaría el grupo B en

estado II sería 21.5 ml., pasando a integrar luego el grupo C en

estado II, donde lograría 26.5 ml. como máximo para luego for-

mar el grupo D en estado IV, llegando a su máximo tamaño, es

decir, 36.5 ml. Por su parte el grupo B' alcanzaría el tamaño máxi-

mo de 34.0 ml. en estado Il, pasando luego a constituir el grupo C*

donde adquiere el estado Il y donde podría lograr como máximo

tamaño 41.5 ml. En estado IV constituye el grupo D' donde alcan-

zaría los tamaños más altos encontrados en la población.

Crecimiento

La incorporación de individuos jóvenes a la población de P.

chilensis se' efectúa probable y principalmente en dos períodos:

uno en Abril y otro en Enero. Estos ejemplares serían los de menor

tamaño observados (1.5 ml) en este trabajo (Fig. 12). Considerando

la duración del período embrionario y de metamoríosos (Cea,

1969-70; 326) en que los individuos miden alrededor de 4004, cabe

suponer que ha transcurrido un tiempo previo antes de alcanzar

el tamaño de 1.5 ml. Individuos criados en acuario demoraron al-

rededor de dos meses en alcanzar este tamaño.

En la Fig. 16 y Fig. 17 se ha graficado la frecuencia porcentual

de individuos de cada grupo de tamaño-edad durante el período

de muestreo, y se observa lo siguiente: 1) el grupo A posee un

máximo en Julio-Agosto con predominio del tamaño 9.0 ml. (1).

En los meses de Noviembre y Febrero hay dominancia de los ta-

maños más pequeños .2) El grupo B presenta un máximo en Mayo

(63.2%) con mayor incidencia de los tamaños 19.0 ml. y 21.5 ml. y

dos más pequeños en Septiembre (43.8%) y Noviembre 25.1%), con

predominancia de los tamaños entre 9.0 ml. y 11.5 ml. 3) El grupo

(1) La predominancia de determinados tamaños se obtuvo a partir de los

datos graficados en la Fig. 12.

ESTADO

ESTADO M EJ do es

ESTADO IM EY Zo Ni 49.0 mi. ys

ESTADO IV KB | 85

PESO SECO 9. E

10 5 46.5 ml

0 A 2 EE 175

. m

10 Ao ] TS

9.0

11.5 mi

Ou ono

onogmomnodJd

ONVWY1 404 0935 0S3d 30 TUNSNIW OIO3WOYA

[ep]

FRECUENCIA MENSUAL DE INQIVIDUOS POR ESTADO DE MADUREZ SEXUAL Y TAMANO

OU Bdomon

ELA DANS

Fig. 12— Polígono de frecuencias (%) mensuales de individuos en los distintos

estados de madurez sexual y curva del promedio mensual de peso

seco (g.). Ambos parámetros están dados para cada tamaño (ml.)

en particular, de la población de P. chilensis Molina, 1782 de Caleta

Leandro, Tumbes, Chile 1968-69 (ver Tabla VII y Tabla IX).

run

20000

aaQa

| SONS

| 7%

| GUA

(Volumen)

55 190 215 24.0 265 290 315 340 365 390 415 440 485 420 ml.

TAMAÑO

909 115 140 1

ES 40 6,2

US 9 >>

US o) y N 09 u) E m) N = S

093S 0S53d 34 SOICIHO dd

Fig. 13.— Curvas del promedio de peso seco (g.) por tamaño (ml.) para cada

estado de madurez sexual de la población de P. chilensis Molina,

1782 de Caleta Leandro, Tumbes, Chile 1968-69 (ver Tabla X).

PROMEDIOS DE PESO SECO

Y=8,16+0.26(X-44.00)

Y 3446 + 0.13(X-24.00)

> ESTADO JvV

C ——— ——

Y=3.22*0.16(X- 16.50) Y=5.39+*0.01(X -35.25)

ESTADO III

B ati . B'

4.0 o

Y=214+0.10(X-11.50' a o

3.0

20 e

1045 ESTADO II

QQ——— TT Tr

A Y=171+0.11(X-1150)

ESTADO 1]

15 40 65 390 115 140 165 190 215 240 26.5 290 315 340 365 390 410 440 465 490

TAMAÑO (Volumen) ml.

Fig. 14.—HRectas de regresión lineal para los parámetros peso seco (g.) versus

tamaño (ml,) en cada estado de madurez sexual de la población de

P. chilensis Molina, 1782 de Caleta Leandro, Tumbes, Chile 1968-69

(ver Tabla X).

C presenta un solo máximo en Octubre (50.7%) con mayor abun-

dancia de individuos entre los tamaños 19.0 ml. y 240 ml. 4) El

grupo D tiene sus máximos en Diciembre-Enero (49.7%) con pre-

dominio de los tamaños 21.5 ml. y 26.5 ml., decreciendo su fre-

cuencia en los meses de Febrero-Marzo con mayor incidencia del

tamaño 34.0 ml. 5) Para el grupo B' existe un solo máximo en Junio

(16.1%) con dominancia del tamaño 24.0 ml. 6) El grupo C” muestra

su mayor frecuencia en Agosto (8.3%) con mayor abundancia en-

tre los tamaños 34.0 ml. a 36.5 ml. 7) Por último el grupo D' au-

menta su frecuencia paulatinamente a partir del mes de Septiem-

bre, alcanzando su máximo en Marzo (25.8%) con mayor inciden-

cia del tamaño 41.5 ml.

Al conjunto formado por los grupos A (en parte), B', €” y D',

los hemos llamado Generación 1 o de Primavera, y al que integran

los grupos A (en parte), B, C y D los hemos denominado Genera-

ción Ill o de Verano.

Tomando en cuenta los resultados obtenidos en: 1) la relación

tamaño-peso seco según el estado de madurez sexual (Fig. 14);

2) las frecuencias mensuales de cada grupo de tamaño-edad (Fig.

16; Fig. 17); y 3) las frecuencias mensuales de cada tamaño inde-

pendiente, en sus distintos estados de madurez gonádica (Fig. 12),

podemos trazar sobre el demograma de frecuencias según tamaño,

las líneas que indican el crecimiento de cada generación (Fig. 9).

Ahora se observa que la inmovilidad en el tiempo de las modas no

es tal. Así tenemos que para ambas generaciones las líneas de

crecimiento indican que éste ocurre principalmente en Primavera-

Verano, deteniéndose casi completamente en Invierno.

Ciclo de Vida.

La duración del ciclo de vida para ambas generaciones se

puede estimar a partir del número de meses que abarcan las tra-

yectorias de las líneas de crecimiento (Fig. 9), más los dos meses

de crecimiento previo para alcanzar el tamaño de 1.5 ml.

La generación 1 tendría, por lo tanto, un ciclo de vida aproxi-

mado de treinta meses y la generación ll de veintiocho meses.

Etología.

La mayoría de las asociaciones de P. chilensis que fueron

removidas de su sustrato natural y trasladadas a un acuario con

fondo de cemento, se volvieron a fijar al cabo de aproximadamen-

te dos semanas, aparentemente sin sufrir ninguna alteración. La

reimplantación parece efectuarse por medio de una neoformación

de la capa coriácea externa de la túnica, a partir de las zonas ex-

puestas por el corte durante la remoción. Es notable, sin embargo,

(08 pue

PROMEDIO MENSUAL DE PESO SECO

2:10

8.0

7.0

6.0

1.0

ESTADO Il] »bo»r»

ESTADO Ill +.....o

ESTADO III ma e

ESTADOS BY dea

Estado lll

Porro > pr oo »r>>”

ea a 41.5 ml.

y dogo.

ES *.. Estado II

as Xx 1.240 9340 ml.

rd o

So pe , a a

e 4 e os s

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9” »»»o»

Estado IV

ds 390 a 490 mi.

Estado IV

5365

Esta do III

Gerrzaaar..6.5 0 26.5 Il.

Estado !l

1.5 0 21,5 mm.

Estado l

"1.5 421.5 ml.

para cada grupo de

hilensis Molina 1782 de Caleta

Leandro, Tumbes, Chile 1968-69 (ver Tabla XI).

g:)

(

O seco

Curvas del promedio mensual de pes

tamaño-edad de la población de P. c

Fig. 15.—

FRECUENCIA MENSUAL DE INDIVIDUOS

— N 4 EN 15] o)

(a) a) [e] So So a

$ . $

Br, Y » y o

"(IX PIGDL 194) 69-8961 SIIYO 'saquinj 'orpunaT Djaog Sp Z8/1 'PUNON

sisu2]149 "J SP UYISD|GOd D] SP POpa-oUpUL] SP ONIS PPPI SP SONPIAIPUT SP SaAppnsuaur (Y) sorvusnoa1, sp ouobijog —91 'S14

GRUPOS DE TAMAÑO -EDAD

Grupo A;Estadol!,15a215ml. »oo»

Grupo B'; Estadol!,240a340ml e.oo.

Grupo C'; Estado/11,2930 a415 ml.

Grupo D'; Estado 1V.390 a 490 ml.

ÚS

>? ap o Y Y

SE ADA ONE DES FAM ASMA IAS TO NACEN

que ejemplares removidos de su sustrato en las mismas condicio-

nes y colocados en acuarios de fondo plástico o vítreo no se re-

implantaron.

Los individuos se presentan la mayor parte del tiempo con am-

bos sifones abiertos. En la Fig. 18 se observa un registro quimográ-

fico de las contracciones de ambos sifones simultáneamente duran-

te 15 minutos después de 12 horas de aclimatación a las palancas

registradoras. El sifón inhalante experimenta pequeñas contraccio-

nes rítmicas que no llegan a cerrarlo, mientras que el sifón exhalan-

te mantiene una actividad mayor, experimentando contracciones

rítmicas que lo cierran completamente. Cuando cualquiera de los

dos sifones es estimulado mecánicamente, ambos se cierran brus-

ca y herméticamente. Lo mismo sucede cuando organismos móviles

tratan de penetrar a cualquiera de los dos sifones. No se observa

respuesta sifonal a las variaciones de intensidad de luz.

Pyura chilensis, como todas las ascidias, es una especie fil-

tradora de agua. El agua penetra por el sifón inhalante y pasa al

saco faringo-branquial, debido especialmente al movimiento ciliar

de los arcos pericoronales y de los bordes de las hendiduras bran-

quiales, circulando hacia el espacio peribranquial desde donde sa-

le al exterior a través del sifón exhalante. De esta manera se pro-

duce una corriente contínua de agua por el interior del animal que

periódicamente es renovada completa y brúscamente, gracias a las

contracciones del sifón exhalante. El volumen de agua filtrada por

un ejemplar de tamaño medio es aproximadamente de 4 litros por

hora (Fig. 2).

En el órgano faringo-branquial se realizan dos importantes pro-

cesos. En primer lugar se retienen aquellos organismos alimenticios

nanoplanctónicos (94 a 60u) y microplanctónicos (604 a 500u) y en

segundo lugar se produce el intercambio gaseoso entre el torrente

sanguíneo branquial y el agua circulante.

El endostilo produce mucus que por el movimiento de sus fla-

gelos y cilios es esparcido formando una delgada capa mucosa en

las paredes branquiales. A esta capa se adhieren las partículos

alimenticias nanoplanctónicas y microplanctónicas. Esta capa mu-

cosa retiene aquellas partículas que por su tamano lograrían pasar

a través de las hendiduras branquiales.

El delgado film mucoso conteniendo partículas alimenticias es

llevado hacia las lenguetas del rafe gracias a los movimientos ci-

Fig. 17.— Polígono de frecuencias (Y) mensuales de individuos de cada gru-

po de tamaño-edad de la población de P. chilensis Molina, 1782 de

Caleta Leandro, Tumbes, Chile 1968-69 (ver Tabla XII).

Me l

FRECUENCIA MENSUAL DE INDIVIDUOS

A E A

0 RPP <A

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2 Dis LO

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GS DN his,

Xx ME

. y

mes

E Loa

—

Erqueo17.

liares, las cuales se encargan de formar el “cordón alimenticio”.

Todas las lengiietas se enrrollan sobre sí mismas hacia la izquierda,

formando una especie de tubo constituido por anillos concéntricos

y gracias al movimiento de los cilios que poseen, hacen pasar el

film mucoso alimenticio por dentro de ellas. De esta manera se

forma el “cordón alimenticio” que es inmediatamente transportado

hacia el esófago. En el tubo digestivo el "cordón alimenticio” 'es

aprovechado sólo en parte, ya que al ser expulsado por el ano no

ha perdido su forma ni coloración verdosa inicial y es común en-

contrar gran parte de diatomeas intactas en él. Así se producen

alrededor de las asociaciones de P. chilensis grandes cantidades

de detritus en el cual vive una fauna asociada abundante y varia-

da (Fig, 19. A).

Predadores y parásitos.

Se ha observado en su medio natural y comprobado en los

acuarios, que los principales predadores de P. chilensis son Con-

cholepas concholepas (Brúguiere, 1789), molusco comestible co-

múnmente denominado “loco”, y un asteroideo, Patiria chilensis

(Lutken, 1859), que parecen actuar de preferencia sobre individuos

jóvenes cuyas túnicas se presentan blandas y delgadas. Se ha

observado también que estas dos especies consumen vorazmente

ejemplares de P. chilensis muertos y a veces en descomposición.

El único endoparásito que se ha observado en P. chilensis

corresponde a la fase gamonte de un gregarinido, del género Lan-

kestería Mingazzini, 1891 que se encuentra con frecuencia en el

estómago. Á veces alcanza a medir hasta 15004 y presenta una

curvatura en ángulo de 45%. Posee un gran núcleo ovoide en el

primer tercio del cuerpo, con un nucléolo excéntrico (Fig. 19 B).

DISCUSION

Gónadas y Gametogénesis.

La forma típica de las gónadas en el género Pyura es de dos

hileras de lóbulos hermafroditas separados por los conductos ge-

nitales, pero existen numerosas variaciones (Monniot, 1965 : 74).

Fig. 18.— Registro quimográfico simultáneo, durante 15 minutos, de las con-

tracciones del sifón inhalante y exhalante de P. chilensis Molina,

1782. La flecha indica un estímulo mecánico producido en el sifón

exhalante.

8l 'B13

SO0JRUIN

9)UD)DYX3Z UOJIS

9JUD)OYlU] UOJIG

Fig. 19—P. chilensis Molina, 1782. A.— Agregación de individuos en la cual

se observan las aberturas sifonales tetralobuladas (S) de cada ejem-

plar y en el ángulo inferior izquierdo detritus (d) producidos por los

animales. B.— Fase gamonte de Lankesteria sp. endoparásito esto-

macal de P. chilensis.; mn. núcleo; nuc. nucléolo.

En P. chilensis las dos gónadas son lobuladas y hermafrodi-

tas, puesto que ambas están compuestas por elementos masculinos

y femeninos. Los sáculos testiculares se sitúan en racimos de tres

o cuatro a cada lado y a lo largo del espermioducto y en la cara

interna de la gónada; los sáculos ováricos están situados en una sola

corrida a ambos lados del oviducto, en la cara externa de la gónada.

Esta conformación de las gónadas en P. chilensis coincide en

parte con la de P. microcosmus (Savigny, 1816), P. spinosa (Sluiter,

1905), P. stolonifera (Heller, 1878), P. shiinoi Tokioka, 1949 y P.

paessleri Michaelsen, 1900, en que los conductos de las gónadas

se ramifican dando a la glándula una forma lobulada. Por otro

lado P. chilensis difiere de P. stubenraunchi Michaelsen, 1900, P.

inflata Van Name ,1920, y P. bouvetensis Michaelsen, 1924, en

que la parte femenina de la gónada de estas especies invade al

conducto genital (Monniot, 1965: 74), aungue si bien es cierto en

P. chilensis se observa una cierta tendencia en este sentido, pues-

to que los sáculos ováricos están constituidos por cortas extensio-

nes laterales del oviducto.

El aspecto y coloración externos de la gónada de P. chilensis

varía de acuerdo a su condición histológica, lo que nos ha permi-

tido distinguir cuatro estados de madurez sexual que son discu-

tidos luego.

La espermiogénesis de P. chilensis es muy similar a la de

Styela plicata Lesueur, 1823 descrita por Tucker (1942: 90), pero

difiere de esta en que en P. chilensis existen, rodeadas por una

cantidad de espermátidas, células esféricas u ovoídeas de cito-

plasma homogéneo y núcleo poco diferenciado, distribuidas irre-

gularmentes en el epitelio germinativo; este hecho da lugar a pen-

sar que tales células podrían desempeñar alguna función nutritiva

durante la histioespermiogénesis, homologando a las células de

Sertoli en los vertebrados, a las células en roseta de anélidos y

las células apicales en el testículo de insectos (Andrew, 1959: 504).

La morfología del espermio de P. chilensis es simple, como

en la mayoría de las ascidias (Franzen, 1958: 17) y consta de una

cabeza alargada y de una larga cola, no observándose una región

intermedia (Cea, 1969-70: 319). Los espermios son expulsados al

medio acuático en grupos de número variable de espermios, ado-

sados uno al lado del otro formando una estructura cteniforme;

luego de unos 10 minutos (a 15?7C) los espermios se separan indi-

vidualizándose. En algunos tunicados como Salpa democratica

Forskal, 1775, por ejemplo, existe un espermatóforo transparente que

reúne las cabezas de varios espermios (Franzen, 1958: 16). En P.

chilensis no hemos observado una membrana similar, por lo que

se podría pensar en un fenómeno de aglutinación producido por

la cercana presencia de los óvulos de la misma gónada, ya que

se observaron grupos de espermios aún al extraerlos directamente

0 AAN

del espermioducto. Sin embargo, en la aglutinación los espermios

se reúnen en forma más o menos desordenada y no con la regu-

laridad con que ocurre en P. chilensis.

En la ovogénesis de P. chilensis hemos distinguido varios es-

tados de acuerdo al crecimiento del ovocito y a sus características,

cuyos sucesos más relevantes son discutidos a continuación.

En primer lugar, desde que el ovocito mide 284 de longitud

hasta cuando alcanza el tamaño de 2004 su citoplasma presenta

afinidad, gradualmente, en aumento por el Feulgen, lo cual indica

existencia de ADN citoplasmático. En efecto, otros autores también

han encontrado ADN citoplasmático en óvulos de otras ascidias.

Así Grosh (1958 : 1078) afirma que el citoplasma de los óvulos de

Molgula presenta afinidad por el Feulgen. Quizás esto tenga im-

portancia en los primeros estados del desarrollo, si es que no hay

nueva síntesis de ADN como sucede en algunos anfibios, Rana

plattyrrhina Steenstrop, 1847 (1) por ejemplo (Jorgensen y Zeuthen,

1952.: 245).

En P. chilensis el núcleo de 14u presente en el ovocito de 28u

de longitud, alcanza su tamaño máximo de 70u en el ovocito de

200u volviéndose progresivamente, a medida que crece, menos afín

de Feulgen. Esto indicaría una dilución del ADN en el gran volumen

nuclear y no, como podría pensarse, en un pasaje de material nu-

clear hacia el citoplasma, considerando que en otras especies y en

particular en Ciona intestinalis Linneo, 1767, se ha observado mi-

gración de material nuclear hacia el citoplasma (Raven, 1961 : 60)

no encontrándose, sin embargo, ADN citoplasmático (Mancuso 1960:

386); Reverberi, 1961 : 62). Esta sustancia nuclear migraría a través

de poros existentes en la membrana del núcleo (Mancuso, 1964 * 274),

y su naturaleza sería semejante a la de los glánulos ribosómicos

(Penman y Holtzman, 1966 : 786).

El ovocito de 28u4 posee un nucléolo de 3u en el cual se ob-

serva pequeñas vacuolas que permanecen incoloras a la pironina

Y mientras que el resto del nucléolo se colorea fuertemente indican-

do la existencia de gran cantidad de ARN. El nucléolo posterior-

mente crece hasta alcanzar el tamaño de 14u y posee vacuolas de

hasta 24 de diámetro en su interior, observándose pequeños y a

veces numerosos gránulos de igual tamaño en el carioplasma. El

nucléolo vacuolado desaparece una vez completada la meiosis.

Sin embargo, algunos pequeños gránulos nucleolares pueden ser

observados. Algo similar sucede durante la ovogénesis de Arbacia

lixula (Lamarck, 1816), Paracentrotus lividus (Linneo, 1758) (Mi-

llonig, et al, 1968: 297) y muchas otras especies (Raven, 1961 : 63).

(1) Sinónimo de Rana temporaria Linneo, 1758.

cli

En P. chilensis, como en todas las ascidias, el óvulo está ro-

deado de dos capas de células foliculares, una capa continua de

células foliculares externas y agrupaciones de células foliculares

internas. Sobre el origen de estas células existen varias hipótesis.

Conklin (1905 : 10) sugiere que las células foliculares de Ciona

intestinalis se originarían de células germinales. Otros autores

opinan que sólo las células foliculares externas se originarían de

células germinales; las células foliculares internas derivarían de

elementos mesenquimáticos, los hemoblastos, similares a los linfo-

citos (Peres, 1954: 58; De Vicentis, 1962: 58). Por otra parte, Mancu-

so (1965 : 247) dice que las células foliculares derivan de dos tipos

de células ameboídeas; las células ameboídeas macronucleadas

darían origen a las células foliculares internas y otro tipo de cé-

lulas ameboídeas, que poseen una gran vesícula con un medio

denso a los electrones, daría origen a las células foliculares exter-

nas. En P. chilensis existe continuidad entre el epitelio germinativo

y la capa folicular primaria en el ovocito de 28u. Posteriormente,

cuando el ovocito alcanza las 60u se observan las primeras agru-

paciones de células foliculares internas. Por otra parte, existe con-

tinua actividad mitótica en la capa folicular externa. Por estos he-

chos, en este caso parece ser válida la explicación de De Vicentis

y Peres, arriba mencionada, considerando además que las células

sanguíneas linfocíticas pueden atravesar la capa folicular externa

y probablemente originar las células foliculares internas. Las célu-

las foliculares externas se originarían por proliferación del epitelio

germinativo.

Después de la formación de la capa folicular primaria comien-

zan a visualizarse los primeros gránulos de vitelo en el citoplasma

del ovocito, evidenciables de PAS. Quizás estas células foliculares

suministren al ovocito los precursores necesarios para la formación

del vitelo, aunque ellas nunca resultaron positivas al PAS. Mancuso

(1965 : 251) indica que la vitelogénesis en el ovocito de Ciona. in-

testinalis coincide con la iniciación de cambios profundos en las

células foliculares. Posteriormente este mismo autor (1967 : 260) con-

firma que la formación del vitelo en Ciona intestinalis ocurre por

pinocitocis desde el ovocito hacia las células foliculares externas

y acumulación de material vitelínico en un complejó laminar, en

conexión con vesículas citoplasmáticas del ovocito. Sería necesario

un estudio de la ultraestructura del ovocito previtelogénico y vi-

telogénico de P. chilensis para aclarar el problema, aunque es

muy probable que la formación del vitelo sea semejante a la que

ocurre en Ciona intestinalis.

ME,

Maduración Gonádica y Puesta.

La mayoría de los autores consideran las gónadas de las as-

cidias como maduras cuando sus óvulos son suceptibles de ser fe-

cundados artificialmente, adjudicando a esta época la ocurrencia

del fenómeno en su medio natural. En realidad esto pudiera no ser

exacto, puesto que los factores ambientales naturales en la época

en que es producido el fenómeno artificialmente, pueden ser dife-

rentes a los existentes en las condiciones experimentales (la tem-

peratura por ejemplo). Por otra parte, Sabbadin (1955 : 243; 1956:

217) estima que la presencia de espermios y óvulos en los conduc-

tos genitales de las gónadas de ascidias no es un criterio exacto

para determinar la época de puesta, ya que la fecundación sólo

puede ocurrir cuando las condiciones ambientales lo permiten.

La madurez gonádica en P. chilensis se efectúa paulatina-

mente encontrándose cuatro estados bien definidos durante su cur-

so, diferenciables por su condición histológica y por su aspecto

externo característico, que hemos denominado: 1) estado 1 o de

diferenciación, 2) estado 1l o de preparación, 3) estado lll o de

preovulación, y 4) estado IV o de ovulación. Durante todo el año,

en mayor o menor proporción en las distintas estaciones climáticas,

existen en la población individuos en los distintos estados gonádi-

cos, con un marcado aumento de individuos en estado IV entre

Septiembre y Marzo. La influencia de la temperatura será discutida

luego. Algo similar se presenta en el Styelidae Dendrodoa grossu-

laria (Van Beneden, 1847) cuyas gónadas presentan durante su

madurez: 1) una condición de Invierno caracterizada por inactivi-

dad y porque los gametos residuales son fagocitados por elemen-

tos sanguíneos; 2) una condición de Primavera en la cual se inicia

la actividad sexual; y 3) una condición de Verano de plena acti-

vidad sexual (Millar, 1954 : 41). Sin embargo, en P. chilensis no se

observa fagocitosis de los elementos sexuales durante los estados

que predominan en Invierno, esto es estado 1 o de diferenciación,

en que no hay diferencia entre testículos y ovarios y génesis de

elementos sexuales, y estado Il o de preparación en el cual co-

mienza la actividad de los epitelios germinativos.

Gutiérrez y Lay en 1965, estudian una población litoral de

"piures” no comestibles en Antofagasta, Chile, que consideran du-

dosamente como pertenecientes a la especie P. chilensis Molina,

1782. A mi juicio los caracteres morfológicos de estos individuos

corresponden a los de Pyura praepucialis (Heller, 1878) y por lo

tanto no coinciden con los de P. chilensis. cabe hacer notar sin

embargo, que existen individuos de la especie P. chilensis, los que

no presentan diferencias morfológicas notables con los de nuestro

estudio, formando poblaciones sublitorales en la Bahía de Anto-

fagasta.

Por lo expuesto anteriormente y para no crear confusión al

referirnos a la especie estudiada por Gutiérrez y Lay la denomina-

remos como Pyura praepucialis (Heller, 1878).

Pyura praepucialis (Heller, 1878) de Antofagasta, Chile, pre-

senta cuatro estados de madurez sexual, diferenciables por su as-

pecto externo (Gutiérrez y Lay, 1965 : 26). En base a los datos en-

tregados por estos autores, hemos calculado los porcentajes men-

suales de individuos de esta población que se encuentran en los

distintos grados de madurez, graficándolos en la Fig. 20 junto con

los promedios mensuales de la temperatura del agua en la Bahía

de Antofagasta durante los años 1962 y 1963 en que se efectuó

este trabajo (1), y de esto se desprende que la mayor parte de

los individuos de la población se encuentran en estado IV entre

los meses de Marzo y Julio, mientras que en Septiembre, Octubre

y Noviembre prácticamente no se presentan individuos maduros.

La relación de los estados madurativos con la temperatura del

agua será discutida más adelante. Es indudable que las poblacio-

nes de P. chilensis en Caleta Leandro y de P. praepucialis en

Antofagasta, presentan diferentes períodos de madurez sexual.

En general los Pyuridae parecen tener una sola estación de

puesta en Verano (Needhan et al, 1937:565). Millar (1960: 122)

estima que para P. georgiana (Michaelsen, 1898) en Georgia del

Sur, la estación de puesta está reducida a Noviembre y Diciembre,

pero al mismo tiempo dice que sin tener conocimiento del índice

de crecimiento de los individuos no es posible asegurar cuando la

puesta tiene lugar.

La temperatura del agua es uno de los factores determinantes

de la puesta de huevos en las ascidias en general. Del análisis de

la Fig. 8 se puede inferir que existe una estrecha relación entre la

temperatura del agua y la madurez sexual en P. chilensis. Así se

obtiene que mientras los valores de las temperaturas medias men-

suales bajan, a partir del mes de Abril, aumenta en la población

la frecuencia de individuos en estados 1 y Il y disminuyen en Sep-

tiembre, cuando la temperatura comienza a subir. Por otra parte,

también en este mes aumenta la frecuencia de individuos en es-

tado 1lI, llegando a su máximo en Octubre, para luego pasar al

estado IV. Este último estado, que es el estado ovulativo, aumenta

notablemente a partir de Septiembre y comienza a decaer sola-

mente cuando las temperaturas bajan a partir del mes de Abril.

En la misma Fig. 8 se han representado las variaciones mensuales

de temperatura obtenidas por diferencia entre los promedios dia-

rios máximos y mínimos de cada mes. Cuando la variación de

(1) Los datos sobre la temperatura del agua en la Bahía de Antofagasta,

fueron proporcionados por el Centro Nacional de Datos Oceanográficos

de Chile (CENDOC) (Tabla XIV).

temperatura es de 1*C, en los meses de Junio, Julio y Agosto, se

pueden observar las frecuencias más altas de individuos en esta-

do 1. Por otro lado, cuando estas variaciones son superiores a 3*C,

se observan las frecuencias más altas de individuos en estado IV.

En P. praepucialis de Antofagasta, en cambio, se observa una

relación inversa entre la frecuencia de individuos maduros y la tem-

peratura del agua (Fig. 20). En efecto, cuando la temperatura se

eleva a partir del mes de Septiembre (15.82:C), comienza a aumen-

tar la frecuencia de individuos en estado 1, alcanzando los más

altos valores en Noviembre, Diciembre, Enero y Febrero cuando

las temperaturas medias están en aumento. Desde Febrero, cuando

la temperatura media es la más alta (20.920), hasta Septiembre,

la frecuencia de individuos en estado 1 disminuye. El estado IV co-

mienza a aumentar su frecuencia en Marzo, cuando la temperatura

media tiende a disminuir, alcanzando sus valores más altos en

JunioJulio, época en que la temperatura presenta los valores más

bajos (Junio 14.9:C; Julio 15.22C). Es necesario considerar que la

población de P. praepucialis de Antofagasta queda expuesta al

sol y al aire y sujeta al ciclo de las mareas, durante todos los días

del año. Esta exposición es de manera uniforme puesto que no hay

grandes diferencias entre las temperaturas medias diarias del aire

durante el año (Gutiérrez y Lay, 1965 : 22).

Como ya se dijo P. chilensis también existe en Antofagasta,

pero las poblaciones que forma no viven en las zonas intermarea-

les, por lo cual sería muy interesante conocer la época de puesta y

su relación con las variaciones de la temperatura del agua en

esta región.

Barrington (1965 : 95) expresa que puede haber diferencias en

la época de puesta de una misma especie de ascidia de distintas

localidades, debido a adaptaciones fisiológicas a las condiciones

del lugar, tales como duración y variación de los niveles de tem-

peratura y a la cantidad de alimento. Ciona intestinalis es una

especie que presenta razas fisiológicas de acuerdo a la tempera-

tura del agua de la zona en que se encuentra. En Androssan Har-

bour, Argshire (Inglaterra), presenta una época de puesta en Ve-

rano (Millar 1952 b:50). En Plymouth ,en cambio, ovula desde

Abril a Noviembre produciendo varias generaciones durante este

período, y en Nápoles (Italia) la puesta es contínua durante todo

el año (Barrington, 1965 : 95).

Ascidia nigra (Savigny, 1816) de Jamaica tiene una puesta

continua durante todo su ciclo de vida una vez que alcanza la

madurez sexual. Sin embargo, muestra una época marcada en que

ocurre el asentamiento larvario, desde Septiembre al final de No-

viembre. Esto puede deberse a un aumento de la intensidad de

CA | A

puesta o a un aumento de la sobrevivencia de los huevos y larvas,

o a ambas causas (Goodbody, 1961 : 408).

La puesta continua parece ser una regla generalizada en las

ascidias tropicales, debido probablemente a que las temperaturas

del agua no sufren grandes variaciones.

En P. chilensis de Caleta Leandro la mayor frecuencia de

individuos maduros, como ya se dijo, se encuentra en los meses de

Primavera-Verano; sin embargo, al parecer son dos las épocas en

que el asentamiento larvario ocurre con mayor éxito, una en No-

viembre y la otra en Febrero. Las razones de este hecho pueden

ser las mismas que da Goodbody para el caso de Ascidia nigra,

y los factores que condicionan este fenómeno, considerando que

la larva de P. chilensis es planctónica, pueden ser los mismos que

condicionan los "bloom” de plancton en la Bahía de Concepción.

Según Rivera (1968: 9) existen dos "bloom” en la Bahía de Con-

cepción; uno menor en Noviembre y otro mayor en Febrero, que

coinciden con los aumentos de la temperatura del agua (Fig. 10)

existiendo una pequeña baja de temperatura en Enero, la cual no

es suficiente para explicar el notable descenso de la cantidad de

plancton en este mes. Esto hace suponer que hay otros factores,

además de la temperatura del agua, que influyen sobre la abun-

dancia de plancton en la Bahía de Concepción, que a su vez po-

drían afectar negativamente la sobrevivencia de huevos y larvas

de P. chilensis en forma directa, y en forma indirecta a través de

una menor disponibilidad de alimento para los juveniles que recién

han finalizado el proceso de metamorfosis y que inician la filtración

de agua. Por otra parte, los individuos de la población alcanzan

sus pesos más altos en Febrero, hecho que coincide con el "bloom”

mayor de plancton (Fig. 10).

Estructura de la Población y Duración del Ciclo de Vida.

El estudio de las etapas progresivas de la maduración de las

gónadas de P. chilensis se efectuó tanto para establecer la época

en que esta especie desova como para tener un criterio relativo

de la edad de cada individuo en relación a su tamaño y a su peso.

Generalmente los ejemplares de P. chilensis presentan formas

y límites externos poco precisos cuando forman bloques producidos

por gregarismos. Al separar los individuos muchas de las proyec-

ciones e irregularidades de la túnica quedan unidas a otros ejem-

plares. Además los individuos se adhieren a conchas de moluscos,

piedras, algas, etc., generalmente difíciles de separar. Por estas

razones, para establecer el tamaño de cada individuo, resulta im-

preciso considerar parámetros lineales. Millar (1954 a: 34) reconoce

que la longitud del cuerpo no es una medida satisfactoria para

determinar el tamaño de las ascidias, puesto que la longitud varía

con el habitat, pero afirma que es la mejor mane-a práctica de

medirlas.

Considerando el caso particular de P. chilensis, nos ha pa-

recido más exacto aunque también más complicado, medir el vo-

lumen de las partes blandas de cada individuo para determinar

su tamaño. Con anterioridad este parámetro había sido usado so-

lamente en el estudio de Pelonaia corrugata Forbes y Goodsir,

1841 (Millar, 1954 b:682) y de Pyura praepucialis (Heller, 1878)

(Gutiérrez y Lay, 1965:27). En ambos casos se considera el vo-

lumen total de cada ejemplar fresco. En el resto de las ascidias

estudiadas se considera la longitud como índice de tamaño.

En el demograma de distribución de frecuencias (Fig. 9) se

observan tres modas durante todos los meses de muestreo de P.

chilensis, que experimentan oscilaciones irregulares de un mes a

otro. Esta distribución trimodal de la estructura de la población

indica que existe más de una época de reclutamiento de juveniles

en la población. Algo similar ocurre en el Decapoda Emerita ana-

loga Stimpson, 1857 en Santa Bárbara, California (Barnes y Wenner

1968 : 4712).

Las oscilaciones irregulares de las modas indican que existe

superposición de grupos de individuos que tienen diferentes eda-

des, pero que presentan rangos de tamaños más o menos similares.

Para averiguar el crecimiento de los individuos y la duración de

su ciclo de vida fue necesario identificar estos grupos que hemos

denominado grupos de tamaño-edad, tomando en cuenta su rela-

ción tamaño-peso seco y su condición de madurez sexual.

El análisis de regresión para lcs parámetros tamaño y peso

seco de la población, efectuado en cada estación climática, dio

como resultado regresiones lineales significativas. Sobre esta base

el análisis de regresión para los mismos parámetros, efectuado pa-

ra cada estado madurativo en particular, permitió encontrar siete

grupos de tamaño-edad en la población.

En estado 1 Grupo A

En estado II Grupo B Grupo B'

En estado III Grupo C Grupo C

En estado IV Grupo D Grupo D'

Fig. 20.— Curva de la variación mensual de la temperatura del mar entre las

medias máximas y mínimas en la Bahía de Antofagasta, Chile en

1962-63. Histograma de frecuencias (Y,) de los estados de madurez

sexual de la población de P. praepucialis (Heller, 1878) y curva de

los promedios mensuales de la temperatura del mar en la Bahía de

Antofagasta, Chile 1962-1963. (ver Tabla XII y Tabla XIV).

Á T* MEDIAS MAX MIN,

7 a

n 5

3 4

Ss»

TEMPERATURA MEDIA MENSUAL

ESTADO /

ESTADO +11

ESTADO! 1112

ESTADO IV 3

TEMPERATURA

a As 9.1..0:0.:

> $

p.0.». o

PR A MO

YNTVTTZZA

> a 6 E j

2.0. .a/,0:.*.

5...

e... ...

AXIS ZIYNOVN 30 SOQVISI

Fig. 20

Los grupos B, C y D forman la generación de Verano y los

grupos B', C' y D', que poseen los rangos de tamaños mayores in-

tegran la generación de Primavera.

Los individuos en estado 1 aparentemente se presentan como

un solo grupo de tamaño-edad, probablemente por ser más homo-

géneo en su estructura, pero las frecuencias mensuales de los in-

dividuos más pequeños en estado 1 (1.5 ml.) (Fig. 12) indican que

existen dos reclutamientos principales a este tamaño: uno en Abril

y el otro menor en Enero. Los tamaños más altos dentro del grupo

A corresponderían a individuos provenientes del reclutamiento de

Enero, como ya veremos.

Hay que considerar que para alcanzar el tamaño de 1.5 ml.,

que es la menor marca de clase considerada en este trabajo, los

individuos demoran un cierto tiempo desde la fijación de la larva.

Cuando se efectúan los recuentos, no es posible ver a ojo desnudo

los tamaños inferiores al intervalo de clase cuya marca es de 1.5 ml.

Observaciones del crecimiento inmediatamente posmetamórfico, efec-

tuadas en acuarios, demostraron que los individuos demoran dos

meses, aproximadamente, en alcanzar este tamaño. Este hecho nos

permitió calcular con relativa exactitud los meses en que ocurre

el asentamiento larvario, esto es, Noviembre y Febrero.

En los individuos en estado IV ocurre similar a lo que se en-

cuentra en el estado 1. Sin embargo, resulta evidente la conforma-

ción de grupos de tamaño-edad en los individuos en estado IV,

puesto que existen en diferentes épocas del año.

Las frecuencias mensuales de cada grupo de tamaño-edad

(Fig. 16) y las frecuencias mensuales de cada tamaño individual-

mente (Fig. 12) permiten trazar las líneas de crecimiento sobre el

demograma de frecuencias (Fig. 9).

Ambas generaciones, Primavera y Verano, presentan un creci-

miento muy lento en Invierno. En Verano la velocidad del creci-

miento aumenta. Esto mismo ha sido observado en otras ascidias,

por ejemplo Ascidiella aspera (Múller, 1776, en Androssan Harbour

(Millar, 1952 b: 45) y Dendrodoa grossularia (Millar, 1954 a: 36).

La generación de Primavera integrada por los grupos de ta-

maño-edad A (en parte), B', C' y D' aporta una menor cantidad de

individuos a la población, que la generación de Verano integrada

por los grupos A (en parte), B, C y D. Tiene un ciclo de vida de

treinta meses, esto es, más largo que la generación de Verano,

cuyo ciclo de vida es de veintiocho meses. Además la generación

de Primavera alcanza los tamaños más grandes encontrados en

la población. Esto se debe a que la generación de Primavera se

integra antes que la generación de Verano a la población, y por

lo tanto abarca un período Primavera-Verano, favorable al creci-

miento, más que la generación de Verano.

a TO

La duración del ciclo de vida de P. chilensis fluctúa, por lo

tanto, entre veintiocho y treinta meses.

En general el ciclo de vida de las ascidias es corto. Ciona

intestinalis presenta un ciclo de vida que oscila entre dieciocho

y veinte meses (Millar, 1952 b:50), Ascidiella aspera de dieciocho

meses, Dendrodoa grossularia de veinticuatro meses (Millar, 1954

a: 48).

Sobre el crecimiento y duración del ciclo de vida de las espe-

cies del género Pyura no existen datos. Goodbody (1969, comuni-

cación personal) estima que los resultados obtenidos en este tra-

bajo están en estrecho acuerdo con las informaciones existentes

para otras especies de varias otras partes del mundo.

Al analizar en P. chilensis los estados madurativos de las gó-

nadas, la época de madurez sexual, las épocas de reclutamiento

de juveniles, así como los demogramas de frecuencias y variacio-

nes del peso seco, hemos obtenido datos que se complementan y

que nos han permitido entregar una información confiable acerca

del comportamiento biológico de estas poblaciones.

a ON

TABLA 1

Frecuencia mensual de individuos de P. chilemsis Molina, 1782

colectados en Caleta Leandro, Tumbes (Chile) 1968-1969.

Febrero 204

Marzo 203

Abril 199

Mayo 284

Junio . 309

Julio 270

Agosto 312

Septiembre 285

Octubre 268

Noviembre 258

Diciembre 225

Enero 209

Febrero 185

Marzo 197

TOTAL 3.408

TABLA Il

Temperaturas medias (*C) mensuales del mar en Caleta Leandro,

Tumbes (Chile) 1968-1969.

Meses T*C media T*C máxima T*C. mínima ATIG

media media máx./mín. ,

Enero La 15.90 11.40 4.50

Febrero 13.70 16.00 12.10 3.90

Marzo 13.05 16.40 12.00 4.40

Abril 12.30 13.00 11.30 2.70

Mayo 11.65 13.40 10.60 2.80

Junio 11.40 11.80 10.70 14M

Julio 11.40 12.00 11.00 1.00

Agosto 11.65 12.20 11.10 1.10

Septiembre 12.60 14.40 11.40 3.00

Octubre 12.90 13.80 11.90 1.90

Noviembre 13.50 15.00 12.20 2.80

Diciembre 13.95 15.60 12.00 3.60

Enero 13.90 15.70 11.20 4.50

Febrero 14.10 17.00 12.95 4.05

Marzo 13.60 16.30 12.20 4.10

TABLA III

Frecuencia de los estados de madurez sexual de la población de

P. chilensis Molina, 1872 de Caleta Leandro, Tumbes (Chile)

1968-1969.

Meses Estado I Estado II Estado III Estado IV

No Nu Ne 1 NE

Febrero 9 414 ZA. 018 49» 22.0 128. .62:7

Marzo 1d; 09 30 14:7 Sr 137 130 5:7

Abril 19 +96 70. 30:38 Zoro 116 gs ¡42.9

Mayo 79 27.8 149 52.5 28 98 ES. "18

Junio 79 25.6 209 67.8 id ¡42 IN AS:

Julio 156 57.8 91... ¡3397 dd. 239 lO. USD

Agosto 183 380 97 310 Z6 183 5 1.9

Septiembre 48 16.8 125 43.8 82 28.8 30 LOS

Octubre 9 .3.4 40 149 136 50.7 83 30.9

Noviembre ld 3 69 2052 96 37.2 86 33.3

Diciembre jr 34) 5: SO 222 136 60.4

Enero Eidos 200 2 o O 26 12.4 166 174.7

Febrero 10 5.4 29 185 27 146 123 66.5

Marzo De (uz 21 10.6 300 17.6 138 69.3

TABLA IV

'" Frecuencia mensual de individuos por tamaño (ml.) de la población

de P. chilensis Molina, 1782 de Caleta Leandro, Tumbes (Chile)

1968-1969.

F ¿ME ¡Ala Mi hi q oy e ¿O ie AN D

ml. ES NON As NE MD. NN ¿Nos N

15 ¡AS EA AP A GS SA 5 8

4.0 A TZ LS MS A Aaa 20" "14 12/ 8. 1014102 10

6.5 207 la 18 224 36: paa, 20. 1/2 12) 11. 18912

9.0 10 14 TESIS PSB A2 330 22917 3 112.076

11.5 qu O 12419 12420029 Z9w 19: 191 13. 18 10

14.0 AA RS ler do ls 9 114101 $ 17 3

16.5 9 MO 23 a 26 117 10 PE EZ dle, 911... 10

19.0 90 Esto 181008849) 289251 30% 27"238 ¡20 do “167 4

21.5 0 21 1023,*881 38, 24 387 41 36" 29/23. 20'0 184 12

24.0 184 200 DNZB 03 ZO CIO 2o 28731 26% 18 2152 16

26.5 Ds pod 1 19 118 (123 017 20 3825 121 147119 20

29.0 MSM 3 dao, 7 1422) 17170706

31.5 A A MS MTS ASE a A AO Ds

34.0 50 do ROO 1 e OTE O ¿SIG ¡| 616 "3 3

36.5 A A A le SINE 8 LO TI Ol

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Sp u9rnp]qod »] sp ([u) ouburo] tod sonprarpur sp ¡onsuau (Y) briouanosa1,J

AE TE YA

TABLA VI

Promedio mensual de peso seco (g) y tamaño (ml.) de la población

de P. chilensis Molina, 1782 de Caleta Leandro, Tumbes (Chile)

1968-1969.

Meses Promedio Promedio

Peso Seco Tamaño

g. ml,

Febrero 5.39 21.95

Marzo 4.69 19.01

Abril 4.47 16.95

Mayo 3.10 14.58

Junio 3.28 14.46

Julio E 2.88 12.69

Agosto 2.81 13.48

Septiembre 3.42 14.00

Octubre 3.98 15.50

Noviembre 4.14 16.12

Diciembre 4.65 I8:LS

Enero 4.79 20.21

Febrero 5.39 ZACSZ

Marzo 19 19.67

TABLA VII

Promedio estacional (trimestral) de peso seco (g.) por tamaño (ml.)

de la población de P. chilensis Molina, 1782 en Caleta Leandro,

Tumbes (Chile) 1968-1969.

ml. Otoño Invierno Primavera Verano

p M-A-M JJ-A S-O-N _ D-E-F

1) 0.56 0.30 037 0.71

4.0 1.50 0.65 0.64 1,13

6.5 1.76 0.97 0.85 1,33

9.0 17A 1.24 1,43 1:75

11.5 2.19 1.78 2.18 2.99

14.0 2057 2.17 2.34 2.07

16.5 3.39 2.58 2.89 3.30

19.0 3.09 2.89 3-10 3,63

23 4.46 122 3.63 4.38

24.0 4.57 3.61 4.01 4.63

26.5 4.48 3.99 4.20 317

29.0 4.92 4.42 4.96 5.16

3 5.19 4.71 9.44 3.87

34.0 5.04 A 9.81 6.46

36.5 4.86 5.48 5.90 6.45

39.0 6.62 6.07 6.99 7.39

41.5 6.90 6.37 7,41 8.18

44.0 209 7.58 8.83

46.5 8.37 7.79 9.08

49.0 8.94 9.46

TABLA VITI

Frecuencia (%) mensual de individuos por tamaño y por estado de

madurez sexual de la población de P. chilensis Molina, 1782 de Caleta

Leandro, Tumbes (Chile) 1968 - 1969.

Estado 1

ml E MIWAL Mo OO ALS O IN > El EN

1.5 2.94 3.92 06.33 2.81 3.55 407: 3.84 210 1.86 2.32 ..433 239 27ID-F205

4.0 0.49 1.96 53.50. 5:28 6.79. 8ul4o 7.05. 7.01. 1:49: 1,93, 0,88, 0.47 1.62 HO50

6.5 0.49 ESO TI IOMA TAIRAO25. 0/61 1.08

9.0 0.49 8.80 4.85 14.07 13.46 2.10

vs 3.52 0.64 7.40 9.29

14.0 5.55 4.80

16.5 HADAZ

19.0 4.48

2ES 0.32

Estado II

ml. E M A M J J A S O N D E E M

1.5 2.94 1:49 LIOZ 3:50

4.0 5.39 3.92 6.03 3.73, 2.71 2:66 478 3INSNSD0

6.5 ASADOS 2/03 1.94 3:15; (6:34 0.42 4.88. 8:82. ADIOS

9.0 0:38 43.92 8:04) Zalla o17 9.47 1.49 6.58 4.44 1201

ES 0:98 16:08 13:16; ¿3:23 8:07 3:35. 3.87 3.11 1.08

14.0 02 "ASZ 082 3.19 3.10

16.5 3.01 8.80 11.00 18.50 3.50 1.55

19.0 13:38 4138:26) 10:37 a3:9Z 09,47 1.93

ZA OLI ASA MESS

24.0 9.70 6.66 6.08

26.5 SID MS dO Oda

29.0 DEZA ez ZA

So 01321685 10:64

34.0 1.60

(Continuación Tabla VIII)

Estado IM

4.0 1.01

6.5 8:38... 1,47 4.78 7.61

9.0 3.43 2.94 6.71 3815.74 1:62 4:06

ES 4.41 1.96 3/3 "9.48 "2.661 143. 1808: 09:07

14.0 1.96 5.88 2.01 4.10 0.77 3:39 0:47:86

16.5 2459" 196-1502 4.10 3.10 5.94

19.0 3.01 0.70 10.07 3.87 1.08

2 1.30 OIISLS 8.13

24.0 2.46 8.42 4.85 8.52

26.5 4.22 SI 73" "265

29.0 2.46 0.64 1.75 4.65

31.5 0.35 0.64 0.37 0.35

34.0 WES" OA" MABMISOO" SS

36.5 0.98 1.47 0:97 0:74 4224 1/05

39.0 0.49 0.32 0.37 1.60

41.5 0.96

Estado IV

11.5 1.96 2.39

14.0 2.87 1552

16.5 1.57 3.43 0.37 0.32 4.88 4.30 5.07

19.0 245 7.35 3.51 0.37 0.35 3.10 -6.227.175 7656. 2.03

21.5 5.39 10.29 10.05 0.74 0.35 3.10 8.44 956 9.72 6.09

24.0 8.82 9.80 5.52 0.35 0.74 0.35 559 3.48 933 8.61% 810 8.12

26.5 10.29 7.84 3.52 - 1.05.. 0.32 0.74 0.70 8.58 5.03 6.66 6.69 5.94 11.67

29.0 5.89 3927 251 T0SY 032 0:37" 0:32 (M70' 5:22 "3,87 "444 5.267, 378 3:04

31.5 3.43 1.96 3.01 1.70 0.32 0.37 0.32 0.70 1.49 2.71 8.44 4.30 1.62 2.03

34.0 2.45 1.96 3:51. 3.16 0.64 1.11 0.32 2.10 1.86 1.93 2.66 2.87 1.62 1.52

36.5 1.47 1:96" 201" 2:46" 0:32 0:37 0:32 1.75 (3:73 3.10 2.66 3.34. 486 2.03

39.0 3.43 4.41 3.01 0.32. 037 032 2.10 2.23 3.87 2.22 430, ¿9068- 4/55

41.5 7.39. 3.92 2.00 0.32 1,05: ¿11 1.93 4.00 ..6.22”7.B2 12.18

44.0 441 2.94 1.00 0.35 0.74 0.77 2.66 334 4.32 4.56

46.5 4.43 0.98 1.00 0.37 0.38 1.33 1.91 2.36 3.04

49.0 1.96 0.98 0.44 1.43 0.54 1.52

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XI VYTIIYL

TABLA X

Promedios de peso seco (g.) por tamaño (ml.) para cada estado

de madurez sexual de la población de P. chilensis Molina, 1782

de Caleta Leandro, Tumbes (Chile) 1968-1969.

Tamaño Estado l Estado II Estado III Estado IV

18 0.48 0.97

40 0.95 154

6.9 1.28 1.61 2.76

9.0 1.41 1.88 1.99

115 1.79 2.18 2.86 3.34

14.0 2.06 2.26 2.81 2.50

16.5 1.88 2.66 3.44 33

19.0 210 2.86 302 3.44

21.5 2.89 3.40 3.92 4.28

24.0 4.78 3.88 4.49

26.5 4.12 3.87 4.85

29.0 4.05 4.78 5.26

315 4.50 5.05 JlOl

34.0 3.91 4.74 5.95

36.5 5.50 5.98

39.0 5.95 TFN

41.5 6.33 7.59

44.0 8.11

46.5 8.61

49.0 9.41

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TABLA XII

Frecuencia mensual de los estados de madurez sexual de la

población de P. praepucialis (Heller, 1878) de la Bahía de

Antofagasta (Chile) 1962-1963 (1).

Meses Estado 1 Estado Il Estado Ill Estado IV

Ne N .% NY N %

Septiembre 7 183 A 000 23. 76.3

Octubre 8 228 4 11.4 O 00 23 Bad

Noviembre 23 58.9 12 307 0 00 4 10.2

Diciembre 20, 03 IN 3Z6 O 0 6 130

Enero ZP PU3SS 12 “242 4 90

Febrero 24 50.0 10 20.8 10 20.8 4 83

Marzo ZAS 9” "20 8 200 15. Ja

Abril S ¿2 5 42l 8 19.9 23. 50

Mayo 4 111 5 138 7 194 20 33

Junio $ 177 5 141 6 18.3 26 SEL

Julio 3 1639 6 159 Y HEA 27- EJ

Agosto 8 20.0 9 225 9 225 14 35.0

Septiembre 15 44.1 iZ. 332 6 16 1 28

Octubre 13 “BE2 9 26.4 EZ A 0, 00m

Noviembre 23 63:9 8 22.2 5 188 O. 00

Diciembre 19 61.2 Sy «16:6 6 10.0 OD 00

Enero 110 85: S 16.1 GUIBS 9 290

(1) Datos obtenidos de Gutiérrez y Lay (1965).

TABLA XIV

Temperatura del mar en la Bahía de Antofagasta (Chile)

1962-1963 (1).

Meses T*C media T?*C máxima T*C mínima ATC

máx./mín.

Septiembre 15.8 16.1 15.0 1.1

Octubre 16.5 17.8 15.0 2.8

Noviembre 17.8 20.0 16.1 3.9

Diciembre 19.8 21.1 17.8 2.3

Enero 20.6 21.7 19.2 2.5

Febrero 20.9 22.8 19.4 3.4

Marzo 19.6 22.2 175 37

Abril 17.8 18.9 16.1 2.8

Mayo 16.4 18.3 15.3 3.0

Junio 14.9 15.6 14.4 1

Julio 15.2 15.8 14,4 1.4

Agosto 15.3 16.7 14.4 23

Septiembre 15.8 16.7 15.0 1.7

Octubre 16.0 1732 153 1.9

Noviembre 17.4 18.3 16.4 1.9

Diciembre 18.4 20.0 16.9 3.1

(1) Información cedida por el Centro Nacional de Datos Oceanográficcs

de Chile (CENDOC).

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velopes of an Ascidian (Styela plicata Lesuer). J. Morphol. 70:

81-108.

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EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA 6UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, EL

29 DE DICIEMBRE DE 1973.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

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DE LA REGION MAGALLANICA.

DL PARTE

MARCO A. RETAMAL R.

RESUMEN

Se hace un estudio sistemático de los Crustáceos Decápodos colectados

durante la Expedición “Hero 72-4” en el sur de Chile.

Se colectó 16 especies, de las cuales 6 son Macruros, 9 Anomuros y 5

Brachyuros.

Los lugares muestreados fueron: Bahía Inútil Seno Almirantazgo, Seno

Otway y Golfo Xaultegua.

Se da además algunas observaciones realizadas por el autor en los lu-

gares de colecta, coloración, asociaciones, tipo de fondos, batimetría, etc.

ABSTRACT

A systematic account of the Decapod fauna collected during “Hero 72-4”

Expedition is done.

16 different species are founded.

Also, some observations about colour of the fresh specimens, bathymetric

range and a new associations are given in this note.

INTRODUCCION

Durante el mes de septiembre de 1972, gracias a la cesión del

R/V “HERO” por parte de la National Science Foundation de U,S,A,

a Conicyt de nuestro país, fue posible realizar una de las etapas

la Expedición “Hero 72-4” en localidades situadas en el extremo

sur de Chile: Bahía Inútil, Seno Almirantazgo, Seno Otway, Golfo

Xaultegua.

Pe o PEN

En las localidades señaladas se realizó un completo programa

de estudios biológicos y oceanográficos (.e. Plancton, Bentos e Hi-

drografía).

Durante el desarrollo de los muestreos bentónicos, mediante

draga del tipo van Veen, Orange Peel y rastra triangular suple-

mentados con rastreos de Otter trawl, fue posible la obtención de

excelentes especímenes de Crustáceos Decápodos, algunos de los

cuales corresponden a especies poco conocidas, objeto de este tra-

bajo.

Especies recolectadas durante esta expedición, creemos corres-

ponden a los primeros especímenes que quedarán en nuestro país,

ya que no existen trabajos que indiquen lo contrario, depositados

en el Laboratorio de Carcinología del Departamento de Biología

Marina y Oceanografía de la U. de Concepción. Algunos de estos

ejemplares constituyen primeros registros para las localidades aquí

indicadas. Además se entregan datos de batimetría por primera vez

registrados para una de las especies y para otras se amplían di-

cho rango.

Todas las especies ya han sido citadas por científicos extran-

jeros en los informes entregados por las Expediciones: “Challenger”,

“Lund” y “Royal Society” entre otras, en localidades siempre cer-

canas al Estrecho de Magallanes, zona en la cual confluyen, por

las corrientes provenientes de ambos océanos, especies subantár-

ticas y antárticas en menor grado.

Aún cuando mencionamos el Estrecho como una zona de gran

mezcla de aguas, parece ser el límite para varias especies que

sólo se conocen en esta zona; para otras especies el límite de dis-

persión son las Islas Falklands por el Norte, en el Atlántico.

LISTA DE ESTACIONES EN LAS CUALES SE RECOLECTO

DECAPODOS.

Bahía Inútil:

Est. la 53%29.8' S; 70912.5" W. Fango y conchillas, Rastra. 105 mts.

Munida subrugosa, Campylonotus semistriatus, Peltarion spino-

sulum, Austropandalus grayi.

Est. 3a 53242.0' S; 70*10.1* W. Fango. Rastra. 170 mts. Peltarion

spinosulum.

Est. 3b 53%40.3" S; 70%00.5" W. Fango. Rastra. 125 mts. Peltarion

spinosulum, Munida subrugosa.

Est. 4a 5336.8' S; 69:50.0' W. Fango. Draga. 32 mts. Peltarion

spinosulum.

Est. 4a 53736.8' S; 69250.0” W. Fango y conchilla. Rastra. 32 mts.

Pinnixa valdiviensis en tubos de Chaetopterus variopedatus Re-

nier, Austropandalus grayi, Munida subrugosa, Munida gregaria,

ee”

Pagurus comptus, Nauticaris magellanica, Campylonotus vagans,

Eurypodius latreille?.

Est. 4b 53230.8' S; 69249.7' W. Arena, conchilla y piedras peque-

ñas. Rastra. 30 mis. Eurypodius latreillei, Munida subrugosa, Mu-

nida gregaria, Pinniza valdiviensis, Austropandalus gray.

Est. 5a 53226.0" S; 69250.0” W. Fango y conchas de Aulacomya

ater. Rastra. 56 mts. Peltarion spinosulum, Munida subrugosa,

Austropandalus grayi, Munida gregaría.

Est. 5b 53227.0” S; 6940.8" W. Fango, arena y pequeñas rocas.

Bastra. 47 mts. Munida subrugosa.

Est. 6a 53227.8' S; 69231.8' W. Fango. Rastra. 46 mts. Peltarion

spinosulum, Pinnixa valdiviensis, Eurypodius latreillei, Munida

subrugosa, Munida gregaria.

Est. 6b 53227.8' S; 69222.1* W. Fango y conchilla. Rastra. 18 mts.

Eurypodius latrreillei, Halicarcinus planatus, Munida subrugo-

sa, Munida gregaría.

Est. 6c 53232.3" S; 69%40.8" W. Fango reductor. Rastra. 54 mts.

Pinnixa valdiviensis, Munida subrugosa.

Est. 7 53:31.4' S; 70%00.5* W. Fango. Rastra. 126 mts. Munida

gregaria.

Mediante un otter trawl se obtuvo muestras de: Munida sub-

rugosa, Munida gregaria y Eurypodius latreiller con el objeto

de complementar los lances de rastra y draga. La batimetría de los

lances con el Otter varió entre 10 y 30 metros.

Seno Almirantazgo:

Est. 1 Alm. Bahía Perry 54*30.5" S; 69:13.8" W. Fango y escoria.

Rastra. 160 mts. Pasiphaea acutifrons, Campylonotus semistriatus.

Est. 2 Alm. 54*19.0” S; 69%26.8" W. Fango y escoria. Rastra. 290

mis. Campylonotus semistriatus.

Est. 3 Alm. 54?14.3" S; 69946.2" W. Fango y ceniza. Rastra. 264 mts.

Campylonotus semistriatus.

Est. 4 Alm. 54*07.8" S; 70%07.1* W. Fango. Rastra. 550 mts.

Pasiphaea acutifrons.

Est. 5 Alm. 53549" S; 70*14.3" W. Fango. Rastra. 484 mts.

Pasiphaea acutifrons.

Seno Otway:

Est 11 OtwUS2eS2 715 1718207 "W. Fango. .Rastra. 57 mts,

Peltarion spinosulum.

Est. 2 Otw. 52*56.1” S; 71*14.0" W. Fondo con rocas pequeñas.

Rastra. 34 mis. Munida subrugosa, Munida gregaria, Peltarion

spinosulum, Austropandalus gray!.

Est. .3.Otw. 53203:.7 S; 71920.7" W. Fango. Rastra. 50 mts. Pel-

tarion spinosulum.

Est. 5 Otw. 52255.2' S; 719343" W. Fango con pequeñas rocas.

Bastra. 58 mts. Peltarion spinosulum, Austropandalus gray,

Munida subrugosa.

Est. 6 :Otw. 52:59:8" 'S; 71:45.6' "W.." Fango: Rastra. 148

Peltarion spinosulum, Campylonotus semistriatus.

Est. 7 Otw. 53204.2* S; 71941.6" W. Fango con pequeñas rocas.

Rastra. 230 mts. Campylonotus semistriatus, Pasiphaea acutifrons.

Est. 8 Otw. 53%09.5".8; "7186.98" "Wi: 'Fango: Rastra!” VID

Pasiphaea acutifrons.

Est. 9 Otw. 53%22.6" S; 71*46:9" W:!- Fañgo.”Rastra.! 110 més

Peltarion spinosulum, Pasiphaea doflein;.

Est. 14 Otw. 53%05.7' S; 72%21.22 W. Fango. Rastra. 128 mts:

Pasiphaea acutifrons, Munida gregaria.

Además se trabajó con Otter trawl, al igual que en Bahía

Inútil. Las especies obtenidas en cinco lances, con batimetría de

10 a 45 metros son: Munida subrugosa, Munida gregaria, Eury-

podius latreillei, Pinnixa valdiviensis, Peltarion spinosulum,

Lithodes antarcticus, Paralomis granulosa, Pagurus comptus,

Halicarcinus planatus, Austropandalus gray!.

Golfo Xaultegua:

Est. 1 Eli. Punta Elina 53*15.7" S; 72:44.8" W. Fango y gran

cantidad de pequeñas rocas. Rastra. 12 a 100 mts. Peltarion spi-

nosulum.

Est. 1 Gaj. Canal Gajardo. Punta Lucumilla. 53200.2' S; 72:56.7" W.

Muy rocoso. Rastra. 164 mts. Campylonotus semistriatus.

Est. 4 Xau. 53%03.6" S; 73%01.7' W. Muy rocoso. Rastra. 70 mts.

Peltarion spinosulum, Pinnixa valdiviensis, Munida subrugosa.

Est. 6 Xau. Muy rocoso. Rastra. 115 mts. Libidoclaea smith.

LISTA DE ESPECIES

SUB ORDEN NATANTIA

Sección CARIDEA

Pasiphaeidae Pasiphaea acutifrons Bate

Pasiphaea dofleini Schmitt

Pandalidae Austropandalus grayi (Cunningham)

Hippolytidae Nauticaris magellanica (A. Milne Edwards)

Campylonotidae Campylonotus semistriatus Bate

Campylonotus vagans Bate

és

SUB ORDEN REPTANTIA

Sección ANOMURA

Lithodidae Lithodes antarcticus Jacquinot

Paralomis granulosa (Jacquinot)

Paguridae Pagurus comptus White

Galatheidae Munida gregaria (Fabricius)

Munida subrugosa (White)

Sección BRACHYURA

Majidae Eurypodius latreillei Guerin

Libidoclaea smithi (Miers)

Hymenosomidae Halicarcinus planatus (Fabricius)

Atelecyclidae Peltarion spinosulum (White)

Pinnotheridae Pinnixa valdiviensis Rathbun

SUB ORDEN NATANTIA

Sección CARIDEA

FAMILIA PASIPHAEIDAE

Pasiphaea acutifrons Bate, 1888

Figs: -1:2-3

Pasiphaea acutifrons Bate, 1888. Rep. Voy. Challenger, Zool., vol.

20D. 0 BL IA O. 3

Localidades:

Seno Almirantazgo: Est. 1 Alm,., Bahía Perry, 13-1X-1972, 2 ejem-

plares. Est. 4 Alm., 15-1X-1972, 2 ejemplares. Est. 5 Alm., 15-1X-1972,

2 ejemplares.

Seno Otway: Est. 7 Otw., 18-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 8 Otw.,

18-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 14 Otw., Estuario Fanny, 18-1X-1972, 1

ejemplar.

Distribución geográfica:

Además de las localidades mencionadas por Holthuis (1952)

entregamos estas nuevas localidades que proporcionaron excelente

material.

E EA

Si bien es cierto son nuevas localidades esperábamos lograr

este material allí, porque en estos lugares existe una influencia

total de las aguas del Estrecho en donde había sido recolectado

anteriormente.

Observaciones:

Afortunadamente, por haber logrado ejemplares intactos, nos

fue posible compararlos con la descripción que sobre la especie

da Bate (1888) y con la de Holthuis (1952), información esta última

basada sobre la observación de una exuvia. Con respecto a las

figuras que entrega Holthuis (op. cit: 12 fig. a) corresponde per-

fectamente al extremo anterior de Pasiphaea acutifrons, no así las

figs. b y c que muestran el telson en vistas dorsal y ventral, res-

pectivamente. Como “se muestra en las figs. 2 y 3 la cantidad de

dientes es mayor, su disposición es algo diferente al esquema

entregado por Holthuis, esto entendemos se debió a que no logró

un buen material para hacer los esquemas.

Pasiphaea dofleini Schmitt, 1932

Figs. 4-5-6

Pasiphaea dofleini Schmitt, 1932. Journ. Wash. Acad. Sci., vol. 22,

y 393 ta, E

Localidades:

Seno Otway: Est. 9 Otw., 18-1X-1972, 1 ejemplar.

Distribución geográfica:

Esta especie fue descrita por Schmitt sobre la base de algunos

ejemplares recolectados en Punta Arenas, Estrecho de Magallanes.

Se indica por lo tanto una nueva localidad y el segundo registro

para esta especie.

Observaciones:

Aún no se tenía datos de la batimetría para esta especie,

nuestro ejemplar fue colectado a 110 metros de profundidad me-

diante una rastra.

Las diferencias entre esta especie y la precedente son: Ausencia

de una carina media dorsal sobre el cefalotórax, por detrás del

diente; el meropodito de los primeros pereiópodos es inerme y el

telson no es bifurcado posteriormente.

FAMILIA PANDALIDAE

Austropandalus grayi (Cunningham, 1871)

Fi Y

Hippolyte grayi Cunningham, 1871, p. 496, pl. 59, fig. 8.

Austropandalus grayi (Cunningham) Holthuis, 1952, p. 16, text.,

figs. 3-4.

Localidades:

Bahía Inútil: Est. 1, 10-1X-1972, 2 ejemplares. Est. 4, 10-1X-1972,

2 ejemplares. Est. 4b, 10-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 5, 11-1X-1972, 2

ejemplares.

Seno Otway: 17-1X-1972, 2 ejemplares. Est. 2 Otw., 17-1X-1972,

2 ejemplares. Est. 5, 17-1X-1972, 5 ejemplares.

Distribución geográfica:

La distribución de esta especie ya fue discutida por Holthuis

(1952), Yaldwyn (1967 : 174, en Garth et al 1967. En 1972 Retamal y

Yáñez amplían la distribución geográfica de esta especie hacia el nor-

te de nuestro país sobre la base de especímenes recolectados en

Bahía de Concepción, lugar para el que había sido citado por Porter

(1936, 1937) sólo por suponer que tal especie debía existir en lu-

gares intermedios a los cuales se había recolectado.

Por lo tanto se puede asegurar, sobre la base de la revisión

de especímenes recolectados por distintas expediciones, que tal es-

pecie existe desde el extremo Sur de nuestro país, hasta la Bahía

de Concepción, y extralimitalmente frente a Cabo Frío, Brasil, cerca

de Río de Janeiro (Borradaile, 1916).

Observaciones:

La profundidad a la cual estos ejemplares fueron muestreados

varía entre los 30 metros de la Est. 4b y los 110 metros de la Est. 1

en Bahía Inútil.

FAMILIA HIPPOLYTIDAE

Nauticaris magellanica (A. Milne Edwards, 1891)

Fig. 8

Hippolyte magellanicus A. Milne Edwards, 1891, p. 46, pl. 5, fig. 2.

Nauticaris magellanica (A. Milne Edwards) Dofflein $ Balss, 1912,

Mitt Naturh. Mus. Hamburg, vol. 29, p. 29.

sio Ap

Localidades:

Bahía Inútil: Est. 4a, 10-1X-1972, 1 ejemplar.

Distribución geográfica:

La distribución dada por Holthuis (op. cit.) indica que la única

especie del género Nauticaris que vive en el extremo sur de

América es N. magellanica. Habita en aguas someras entre los

1.8 y 6.5 mts., aún cuando el mismo autor hace referencias a pro-

fundidades de hasta 65 mts. El ejemplar recolectado tiene una ba-

timetría de 32 metros.

FAMILIA CAMPYLONOTIDAE

Campylonotus semistriatus Bate, 1888

Fac. i8

Campylonotus semistriatus Bate, 1888, Rep. Voy. Challenger, Zool.

24D. 708, pl. 128, MES Ll. 2

Localidades:

Bahía Inútil: Est. la, 10-1X-1972, 1 ejemplar.

Seno Almirantazgo: Est. 1 Alm.3 (Bahía Perry), 13-IX-1972, 1

ejemplar. Est. 2 Alm. 13-1X-1972, 2 ejemplares. Est. 3 Alm., 14-1X-1972,

1 ejemplar.

Seno Otway: Est. 6 Otw., 17-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 7 Otw.,

18-1X-1972, 1 ejemplar.

Golfo Xaultegua: Est. 1 Gaj. (Canal Gajardo, Punta Lucumilla),

23-1X-1972, 2 ejemplares.

Distribución geográfica:

La distribución de esta especie está restringida “sólo a la re-

gión magallánica” (Holthuis op. cit.), por lo tanto los ejemplares

colectados durante la presente expedición sólo aumentan en la zona

mencionada el número de localidades y de ejemplares obtenidos.

Observaciones:

Los rangos batimétricos registrados están entre las profundi-

dades ya conocidas. La coloración, in vivo, era de un anaranjado

fuerte; fijados en alcohol adquieren rapidamente una coloración

blanco-amarillenta.

—f0E=

Campylonotus vagans Bate, 1888

Figi'10

Campylonotus vagans Bate, 1888, Rep. Voy. Challenger, Zool., vol.

ASIS pl 122: La. 3.

Localidades:

Bahía Inútil: Est. 4a, 10-1X-1972, 1 ejemplar.

Distribución geográfica:

Es una especie de la región Patagónica; a los lugares de co-

lecta mencionados por Holthuis (op. cit.) debemos agregar esta

nueva localidad.

Observaciones:

Se pudo comparar nuestro especimen con la descripción que

da Bate sobre la especie tipo, y las dadas más tarde por A. Milne

Edwards (1891) ya que, afortunadamente, logramos un ejemplar

intacto. Coincide perfectamente con la descripción de ambos au-

tores, pero con respecto a la fig. l6a : 1971 dada por Holthuis, que

corresponde al rostro de Anchistiella Senevili de A. Milne Edwards,

existen claras diferencias producidas por la ruptura y regeneración

posterior que sufrió aquel ejemplar.

SUB ORDEN REPTANTIA

Sección ANOMURA

FAMILIA LITHODIDAE

Lithodes antarcticus Jacquinot, 189?

Lithodes antarcticus Jacquinot, 184?, pl. 7; pl. 8, figs. 9-14.

Localidades:

Seno Otway: 17-IX-1972, 2 ejemplares (Otter trawl).

Distribución geográfica:

Según Haig (1955 y 1967 en Garth et al) "Desde el extremo

Norte de la Isla de Chiloé hacia el Sur, alrededor del extremo sur

de Sudamérica y a través del Estrecho de Magallanes a Tierra del

Fuego. Desde la playa hasta los 150 metros (82 brazas)”.

Según IFOP "En el Pacífico desde Valdivia al Cabo de Hor-

nos”. En el Atlántico alcanza hasta las Islas Malvinas y hacia el

Norte hasta Bahía Camarones (Aprox. 44%40" lat. S) (Campodóni-

cop" 1974),

REO LEN

De acuerdo a estos registros nuestro especimen fue recolecta-

do en una localidad ubicada entre los límites ya conocidos. La

profundidad del lance fue de 5 a 10 metros.

Observaciones:

Fue posible comprobar en el terreno las observaciones comunica-

das (com. pers.) por el Dr. Dawson, en el sentido de que las espi-

nas que cubren tanto el caparazón como las patas son más abun-

dantes y agudas en los ejemplares juveniles que en los adultos.

El color “in vivo” es verde oliva, que lo hace pasar inadver-

tido, semejante a las algas entre las cuales vive.

Los dos ejemplares obtenidos estaban parasitados con Bria-

TOSSACUS SP.

Paralomis granulosa (Jacquinot, 189?)

Lithodes granulosa Jacquinot, 184?, pl. 8, figs. 15-21.

Paralomis granulosa (Jacquinot) White, 1856, p. 134.

Localidades:

Seno Otway: 17-1X-1972, 2 ejemplares (Otter Trawl).

Distribución geográfica:

"Desde Paso Tenaum, frente a la costa Este de la Isla de

Chiloé, provincia de Chiloé, alrededor del extremo sur de Sudamé-

rica y a través del Estrecho de Magallanes a Tierra del Fuego e

Islas Falklands. El paso Tenaum representa una extensión del lí-

mite hacia el Norte, desde Puerto Lagunas, Provincia de Chiloé.

Batimetría desde la playa hasta las 55 brazas” (Haig, 1955).

Tanto la localidad como la batimetría de la misma están com-

prendidos entre los valores ya conocidos.

Observaciones:

Al igual que la especie precedente presentan parásitos en el

abdomen, estos son cirripedios del género Briarossacus (Stuardo

y Solís, 1963).

Los ejemplares colectados son especímenes juveniles, presen-

taban una coloración morada moteada de blanco. Presentan como

epibiontes poliquetos del género Serpula.

FAMILIA GALATHEIDAE

Munida gregaria (Fabricius, 1793)

Figs. 11-12-13

Galathea gregaria Fabricius, 1793, p. 473.

Munida gregaría (Fabricius) Miers, 1881, p. 73 (parte 7).

Localidades:

Bahía Inútil: 10-1X-1972. Est. 4, 10-1X-1972. Est. 4b, 10-1X-1972.

Est. 6, 11-1X1972.*"Est. 6b'"11-1X21972." Est. 71211972.

Seno Otway: 17-IX-1972. Est. 2 Otw., 17-IX-1972. Est. 14, (Estua-

rio Fanny), 20-1X-1972.

Distribución geográfica:

"Discontinua, desde Calbuco, provincia de Llanquihue, alrede-

dor del extremo sur de América del Sur y a través del Estrecho

de Magallanes a Tierra del Fuego e Islas Falklands; también en

Nueva Zelandia. Distribución vertical, desde la playa a las 60 bra-

zas” (Haig, 19509).

Observaciones:

Los especímenes recolectados forman parte de una población

completa; en ella encontramos, al igual que para Munida subrugosa

especie con la cual se encuentra normalmente, hembras juveniles,

adultas, ovígeras, machos juveniles, etc.

La presencia de Serpula sp. como epizoo es frecuente.

Munida subrugosa (White, 1847)

Figs. 14-15-16

Galathea subrugosa White, 1847, p. 66.

Munida subrugosa (White) Dana, 1852, p. 479.

Localidades:

Bahía Inútil: 10-1X-1972. Est. 1, 10-1X-1972. Est. 3Sb, 10-1X-1972.

Est. 4a, 10-1X-1972. Est. 4b, 10-1X-1972. Est. 5a, 11-IX-1972. Est. 5b,

11-12-1972. Est. 6a, 11-1X-1972. Est. 6b, 11-1X-1972. Est. 6c, 11-1X-197%.

Seno Otway: 17-IX-1972. Est. 2 Otw., 17-I1X-1972. Est. 5 Otw.,

17-1X-1972.

Golfo Xaultegua: Est. 4 Xau., 22-1X-1972.

Distribución geográfica:

“Discontinua. Desde Ancud, Provincia de Chiloé, alrededor del

extremo sur de América del Sur y a través del Estrecho de Maga-

llanes, hacia el norte hasta Montevideo en la costa Atlántica. Tam-

bién Nueva Zelandia y las islas subantárticas, sur de Australia. Dis-

tribución vertical, desde la playa hasta 600 brazas” (Haig, 1955).

Observaciones:

Existe gran abundancia de esta especie, como de la preceden-

te, que podría incorporarse en mayor medida a los escasos recur-

sos renovables que son explotados actualmente.

FAMILIA PAGURIDAE

Pagurus comptus White, 1847

Figs. 17-18-19

Pagurus comptus White, 1847, p. 59.

Localidades:

Bahía Inútil: Est. 4a, 10-1X-1972, 1 ejemplar.

Seno Otway: 17-1X-1972, 2 ejemplares (Otter Traw]l).

Distribución geográfica:

"Común en la región magallánica, Islas Falklands y Montevi-

deo por el Atlántico y Valparaíso por el Pacífico” (Forest, J. M. de

Saint Laurent, 1967).

Observaciones:

La batimetría dada para la especie va desde los 16 a los 340

metros. Nuestros ejemplares fueron recolectados a profundidades

que van desde los 5 a los 32 metros desde el interior de conchas de

Tegula atra.

Sección BRACHYURA

FAMILIA MAJIDAE

Eurypodius latreillei Guerin, 1828

Eurypodius latreillei Guerin, 1828, p. 354, pl. 14, figs. 1-11, (loca-

lidad tipo, Islas Falklands).

Localidades:

Bahía Inútil: 10-1X-1972, 5 ejemplares. Est. 4a, 10-1X-1972, 2 ejem-

plares. Est. 4b, 10-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 6a, 11-1X-1972, 1 ejemplar.

Seno Otway: 17-1X-1972. (Otter trawl).

Distribución geográfica:

“Desde Bahía Independencia, Perú, hasta el sur del Estrecho

de Magallanes y Tierra del Fuego, hacia el norte por el Atlántico

hasta el Golfo de San Matías, Argentina. (Extralimitalmente: Río

de Janeiro, Brasil) Islas Falklands. De 4 a 77.5 brazas” (Haig, 1955).

Observaciones:

Los ejemplares recolectados fueron obtenidos desde fondos ro-

cosos en los que hay gran cantidad de Macrocystis sp. Frecuen-

temente con epizoos tales como Algas, Poríferos y Briozoos.

Libidoclaea smithi (Miers, 1886)

Libinia smithii Miers, 1886, p. 73, pl. 9, figs. 1-1c localidad tipo

frente a Chiloé, 245 fathoms).

Libidoclaea smithii (Miers) Rathbun, 1925, p. 226, pls. 74, 75; pl.

23L. 1:03:

Localidades:

Golfo Xaultegua: Est. 6 Xau. 24-1X-1972, 1 ejemplar.

Distribución geográfica:

“Desde Calbuco, Chile, al Estrecho de Magallanes. 61-1.050

brazas” (Garth, op. cit. : 28).

Observaciones:

De acuerdo a los registros batimétricos existentes ésta es una

especie archibentica.

FAMILIA HYMENOSOMIDAE

Halicarcinus planatus (Fabricius, 1775)

Cancer planatus Fabricius, 1775, p. 403 (localidad tipo, Tierra del

Fuego).

Halicarcinus planatus (Fabricius) White, 1846 b, p. 178, pl. 2, fig. 1.

Localidades:

Bahía Inútil: Est. 6b, 11-1X-1972, 1 ejemplar.

Seno Otway: 17-1X-1972, 1 ejemplar.

Distribución geográfica:

"Desde Bahía Taltal, Chile, a través del Estrecho de Magalla-

nes a las Islas Falklands, desde ahí vía Islas Antárticas de las

Orcadas del Sur, Príncipe Eduardo, Kerguelen, Macquarie, Camp-

bell y Auckland a Nueva Zelandia. A 270 metros”. (Dofflein y Balss,

1912, en Garth 1957).

Observaciones:

El ejemplar colectado en Bahía Inútil se obtuvo desde un

fondo de fango y conchillas a 18 metros, el de Seno Otway fue

capturado entre 10 y 30 metros.

ar ae

FAMILIA ATELECYCLIDAE

Peltarion spinosulum (White, 1843)

Atelecyelus spinosulus White, 1943, p. 345.

Peltarion spinosulum (White) White, 1847.

Localidades:

Bahía Inútil: Est. la, 10-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 3a, 10-IX-1972,

1 ejemplar. Est. 3b, 10-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 4a, 10-1X-1972, 1

ejemplar. Est. 5a, 11-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 6a, 11-1X-197%, 1 ejemplar.

Seno Otway: 17-1X-1972 (Otter Trawl). Est. 1 Otw., 17-1X-1972,

2 ejemplares. Est. 2 Otw., 17-1X-1972, 2 ejemplares. Est. 3 Otw., 17-IX-

1972, 5 ejemplares. Est. 5 Otw., 17-1X-1972, 2 ejemplares. Est. 6 Otw.,

17-1X-1972, 2 ejemplares. Est. 9 Otw., 18-1X-1972, 1 ejemplar.

Golfo Xaultegua: Est. 1 Eli. (Caleta Elina). 23-1X-1972, 1 ejem-

plar. Est. 4 Xau., 24-1X-1972, 4 ejemplares.

Distribución geográfica:

“Desde Junín e Iquique, Chile (extensión hacia el norte desde

Valparaíso), hasta el sur del Estrecho de Magallanes y Ushuaia,

Argentina, desde ahí al norte hasta el Cabo Santa María, Uruguay.

Islas Falklands, 0 a 166,6 brazas” (Haig, 1955).

Observaciones:

Coloración morada moteada de blanco, patas anaranjadas.

FAMILIA PINNOTHERIDAE

Pinnixa valdiviensis Rathbun, 1907

Pinnixa valdiviensis Rathbun, 1907, p. 45, pl. 3, figs. 2, 3, text. fig 1.

(Localidad tipo, Corral, provincia de Valdivia).

Localidades:

Bahía Inútil: Est. 4a, 10-1X-1972, 3 ejemplares. Est. 4b, 10-1X-1972,

l ejemplar. Est. 6a, 11-1X-1972, 1 ejemplar. Est. 6c, 11-1X-1972, 1 ejem-

plar.

Seno Otway: 17-1X-1972 (Otter Trawl).

Golfo Xaultegua: Est. 4 Xau. 24-1X-1972, 2 ejemplares.

Distribución geográfica:

“Desde las Islas Chinchas, Perú, a Punta Arenas (Magallanes),

Estrecho de Magallanes. 0-20 metros (11 brazas)”. (Garth, 1967).

E A

Observaciones:

Las localidades son nuevas, siempre entre los límites ya cono-

cidos; ampliamos la distribución vertical hasta los 54 metros (Est.

6c, Bahía Inútil).

La mayoría de los especimenes fueron colectados desde los

tubos de Chaetopterus variopedatus Renier, los cuales albergan

también otra especie del género, P. bahamonde:í Garth (Garth 1957,

Retamal y Yáñez, 1973).

Esta especie también ha sido encontrada asociada a un nuevo

comensal, Urechis chilensis (Múller) (Retamal y Trucco, 1973).

CONCLUSIONES

Luego del exhaustivo análisis de las muestras obtenidas logra-

mos identificar 15 especies de Decápodos pertenecientes a 11 fa-

milias.

La distribución geográfica de las nuevas muestras se encuen-

tran entre los límites ya conocidos, los lugares muestreados cons-

tituyen nuevas localidades.

El Estrecho de Magallanes aparece como la zona en la cual

se distribuye la mayoría de las especies y su directa influencia en

los lugares señalados permiten la dispersión de las especies men-

cionadas en las áreas que bana.

La batimetría registrada para las especies está entre los lími-

tes ya conocidos, excepción hecha de dos especies: Pasiphaea

dofleini, recolectada en Seno Otway, Est. 9 Otw. a 110 metros,

Este dato es el primero que se tiene para dicha especie y para

Pinnixa valdiviensis ampliamos su distribución vertical hasta los

94 metros.

Creemos, finalmente, que con la presente nota estamos contri-

buyendo al progreso, o al menos a un mejor conocimiento de nues-

tra fauna marina y especialmente a ésta, que por encontrarse en

localidades apartadas de nuestros lugares habituales de trabajo

es difícil de obtener.

AGRADECIMIENTOS

A Conicyt que nos distinguió al seleccionarnos para esta Ex-

pedición y por su intermedio a la National Science Foundation.

A las autoridades universitarias por darnos las facilidades ne-

cesarias para nuestra participación.

Al señor capitán del Hero, Pieter Lenie y por su intermedio

a su excelente tripulación.

Ni —

A mis colegas señores Jorge Hermosilla, Lcdo. en Biología

(DBMO, Universidad de Concepción) y Oscar Zúñiga, Universidad

de Chile, sede Antofagasta, por su colaboración en la obtención

de las muestras, sin la cual habríamos limitado nuestro trabajo a

un número inferior de estaciones.

Al señor José Bustos por sus excelentes dibujos.

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1.—Pasiphaea acutifrons. Vista lateral del cefalotórax.

2.—Pasiphaea acutifrons. Vista dorsal del telson.

3.—Pasiphaea acutifrons. Vista ventral del telson.

4. —Pasiphaea dofleini. Vista lateral del cefalotórax.

5.—Pasiphaea dofleini. Vista dorsal del telson.

6.—Pasiphaea dofleini. Vista ventral del telson.

Ap EL

7. — Austropandalus As Vista lateral del cefalotórax.

8.— Nauticaris magellanica. Vista lateral del cefalotórax.

9.— Campylonotus semistriatus. Vista lateral del cefalotórax.

10.— Campylonotus vagans. Vista lateral del cefalotórax.

11.— Munida

12.— Munida

13.— Munida

14.— Munida

15.— Munida

16.— Munida

gregaria. Vista dorsal del cefalotórax.

gregaria. Segundo segmento abdominal.

gregaria. Tercer maxilípodo.

subrugosa. Vista dorsal del cefalotórax.

subrugosa. Segundo segmento abdominal.

subrugosa. Tercer maxilípodo.

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ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, EL

31 DE DICIEMBRE DE 1973.

MACIAS 40

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GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

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BRIOZOOS MARINOS CHILENOS IT.

BRIOZOOS DE CHILE AUSTRAL Ll.

Por

HUGO Il MOYANO GC.

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“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del pais hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

BRIOZOOS MARINOS CHILENOS Il.

BRIOZOOS DE CHILE AUSTRAL lI.

Por

HUGO 1 MOYANO G. (Il)

RESUMEN

Se estudiaron 15 especies de Bryozoa obtenidas entre el Golío de Penas

(47200'S; 75%00"W) y la Bahía Inútil en la Isla Grande de Tierra del Fuego

(53230'S; 70%00"W) por la Expedición Centolla del Departamento de Pesca y

Caza (1962) y por los cruceros del Hero buque de la National Science Foun-

dation (USA).

Las cinco especies siguientes se describen como nuevas para la ciencia

Hippoflustra variabilis n. sp. Smittipora angustilobata n. sp. Osthimosia

magna n. sp.; Osthimosia mamillata n. sp. y Fasciculipora parva n. sp. Se pro-

pone además al nuevo género Orthoporidroides n. gen. para incluir a

Cellepora armata Hincks var. erecta Waters, 1888.

Se redescribe e ilustra profusamente las restantes especies descritas a

fines del siglo pasado o a comienzos del presente por las grandes expedicio-

nes europeas a los mares antárticos y subantárticos.

ABSTRACT

Fifteen species of Bryozoa collected by several chilean expeditions to the

Magellanic Region between the Golfo de Penas (47%00'S; 75%00"W) and the

Bahía Inútil (53230'S; 70%00"W) during the years 1962, 1969 and 1972, are here

described.

The following five species are described as new: Hippoflustra variabilis

n. sp; Smittipora angustilobata n. sp.; Osthimosia magna n. sp. Osthimosia

mamillata n. sp. and Fasciculipora parva n. sp. A new genus Orthoporidroides

n. gen. to include Cellepora armata Hincks var. erecta Waters, 1888 is proposed.

(1) Profesor. Departamento de Zoología, Universidad de Concepción.

E a

INTRODUCCION

La fauna briozoológica chilena mejor conocida es, sin duda,

la del área austral, pues su estudio que parte con d'Orbigny (184]-

1847) persiste hasta hoy. Importantes aportes a su conocimiento

fueron hechos por Busk (1884) y Waters (1888) que estudiaron las

colecciones del Challenger; Jullien (1888) que describió las especies

recolectadas por la Misión Científica del Cabo de Hornos y Calvet

(1904) que dio cuenta de las muestras del Hamburger Magalhaen-

sische Sammelnreise. Con posterioridad a 1900 casi todas las ex-

pediciones antárticas europeas recolectaron algunas muestras en el

área del Estrecho de Magallanes, del Cabo de Hornos o del Canal

Beagle, por lo que en sus trabajos aparecen muchas especies pre-

sentes en Chile Austral.

Entre los. autores que elaboraron informes de esas expediciones

están: Waters (1904) que estudió los briozoos recolectados por la

Belgica; Calvet (1909) los de Le Francais: Borg (1944) que dio a co-

nocer un monumental trabajo sobre los Cyclostomata antárticos y

subantárticos de la Expedición Sueca de 1901-1903; Hastings (1943)

que publicó un excepcional trabajo sobre los briozoos antárticos y

subantárticos recolectados por las Expediciones del Discovery, de

la National Antarctic Expedition, en la British Antarctic (Terranova)

y de otras menores. Y habría que señalar por último, los recientes

estudios de Androsova (1968 y 1972) de los briozoos de las Expedi-

ciones Antárticas Soviéticas de 1955-1958.

Aún cuando esta fauna es mejor conocida que otras del país

reserva todavía especies nuevas por describir y la constatación de

la presencia de otras conocidas previamente del Atlántico Sur o

de las Islas Periantárticas tal como lo demuestra el presente tra-

bajo, que tiene por objeto describir nuevas especies, redescribir

otras y ampliar la distribución de algunas.

MATERIALES Y METODOS

Las especies estudiadas provienen del área comprendida en-

tre el Golfo de Penas (47:00'S y 75*%00"W) y la Bahía Inútil en la

Isla Grande de Tierra del Fuego (53%30'S y 70*00'W). Fueron obte-

nidas en oportunidades diversas por miembros del Departamento

de Zoología de la Universidad de Concepción entre 1962 y 1972.

Las muestras de Bahía Inútil fueron recolectadas durante el

desarrollo de la Expedición Centolla del Departamento de Pesca y

Caza (1962) y aquellas obtenidas entre el Estrecho de Magallanes y

el Golío de Penas durante Expediciones realizadas a bordo del

Hero barco de Investigación de la National Science Foundation

(USA) en 1969 y 1972.

Los métodos de estudio de las muestras han sido los usuales

ya descritos en trabajos anteriores del autor. Para todas las especies

se ha confeccionado muchos dibujos con el fin de aclarar detalles

Y para representar el tamaño relativo de unas especies con res-

pecto de las otras.

Para los taxa de categoría suprafamiliar se ha seguido a Ryland

(1970) y para el orden Cyclostomata los criterios de Borg (1926 y

1944) y como complementación general el sistema de Bassler (1953).

Como se pretende publicar trabajos que continúen éste, se con-

sidera como Chile Austral al área que va entre los paralelos 41 y

56 de latitud sur.

POSICION SISTEMATICA DE LAS ESPECIES

Phylum BRYOZOA Ehrenberg, 1831

Clase GYMNOLAEMATA Allman, 1856

Orden CHEILOSTOMATA Busk, 1852

Suborden ANASCA Levinsen, 1909

Superfamilia MALACOSTEGOIDEA Levinsen, 1902

Familia FLUSTRIDAE S$Smitt, 1867

Hippoflustra variabilis n. sp.

Familia CALLOPORIDAE Norman, 1903

Foveolaria elliptica Busk, 1884

Foveolaria falcifera Busk, 1884

Superfamilia COILOSTEGOIDEA Levinsen, 1902

Familia ONYCHOCELLIDAE Jullien, 1881

Smittipora angustilobata n. sp.

Familia MICROPORIDAE Hincks, 1880

Andreella uncifera Jullien, 1888

Familia STEGINOPORELLIDAE Bassler, 1953

Ogivalia elegans (d'Orbigny), 1847

Suborden GYMNOCYSTIDEA GSilén, 1942

Familia CELLARINELLIDAE Moyano, 1970

Cellarinella dubia Waters, 1904

Suborden ASCOPHORA Levinsen, 1909

Familia SCHIZOPORELLIDAE Jullien, 1903

Spiroporina pentagona (d'Orbigny), 1847

Familia CELLEPORINIDAE Harmer, 1957

Osthimosia magna n. sp.

Osthimosia mamillata n. sp.

Familia LEKYTHOPORIDAE Levinsen, 1909

Turritigera stellata Busk, 1884

Orthoporidroides n. gen.

Orthoporidroides erectus (Waters), 1888

Clase STENOLAEMATA Borg, 1926

Orden CYCLOSTOMATA Busk, 1852

Superfamilia TUBULIPOROIDEA Milne-Edwards, 1838

Familia TERVIIDAE Canu y Bassler, 1920

Nevianipora milneana (d'Orbigny), 1847

Nevianipora pulcherrima (Kirkpatrick), 1890

Familia FASCIGERIDAE d'Orbigny, 1853

Fasciculipora parva n. sp.

DESCRIPCION DE LAS ESPECIES

Hippoflustra variabilis n. sp.

ELO lo o y ld ap

Diagnosis:

Zoario parcialmente incrustante, unilaminar, anchamente folia-

do, amarillento y traslúcido, fijo flojamente al sustrato por rizoides

basales escasos. Zooides irregularmente rectangulares, de pared

frontal traslúcida con un opérculo incompletamente diferenciado de

ella; sin criptocisto o muy escasamente desarrollado proximalmen-

te. Gimnocisto en forma de espinas de número y desarrollo variables

que pueden llegar a faltar totalmente, presentes siempre en los

bordes laterales. Avicularias poco numerosas, irregularmente cua-

drangulares, prolongadas por una de sus esquinas distales; siem-

pre presentes en el lado distal de una bifurcación; de mandíbula

irregularmente triangular torcida a la derecha o izquierda. Ovicela

endozoecial, calcárea, hemisférica, completamente por debajo de

la pared frontal del zooide distal. Con 8 a 10 y 2 a 3 séptulas uni-

poras en las paredes laterales y distal-proximal respectivamente.

El nombre especifica la gran variabilidad del número, tamaño

y disposición de las espinas zooidales marginales.

Material estudiado:

20 zoarios más o menos completos de 1-1,5 cm por 2-3 cm y

10 trozos zoariales de alrededor de 1 por 1 cm que incrustaban tu-

bos de Chaetopterus sp. (Annelida Polychaeta). Fueron recolecta-

dos por el autor en la Caleta Hale (47257,4'S; 74237,8'W) a 40-50 m

de profundidad mediante rastreo efectuado desde el Hero.

Un zoario que incrusta un trozo de Smittina lebruni (Waters),

1905 recolectado desde el Hero por el Dr. José Stuardo ,a 70 m de

profundidad fuera del Canal Oeste (50936'S; 75242'W) el 22 de Oc-

tubre de 1969.

Observaciones:

Esta nueva especie concuerda perfectamente con la diagnosis

del género Hippoflustra Moyano, 1972, basado en tres especies

flustrinas del Pacífico Norte. Hippoflustra variabilis n. sp. difiere

de H. serrata (McGillivray), 1869 en la longitud de la mandíbula

avicularial y en el número y forma de las espinas lateromarginales;

de H. incrustans (Silén), 1941 en la forma zooidal, avicularial y

en las espinas; y de H. vegae (Silén), 1941 en las espinas y man-

díbulas aviculariales, que en ésta son semicirculares. Se diferencia

de ellas además en que sus ovicelas no están asociadas con las

avicularias en las muestras examinadas.

Tipos:

El holotipo y 20 paratipos quedan depositados en el Museo

Zoológico de la Universidad de Concepción, Chile.

Distribución:

Archipiélago Madre de Dios y área del Golfo de Penas en

Chile Austral.

Foveolaria elliptica Busk, 1884

Figs. 10-13

Foveolaria elliptica Busk, 1884: 68, Lám. 23, Figs. 5a-c.

Foveolaria elliptica Busk, 1884; Waters, 1888: 11, Lám. 3, Fig. 19.

Foveolaria elliptica Busk; Bassler, 1953: G163, Fig. 124, 9.

Diagnosis:

Zoarios libres, erguidos, ramificados dicotómicamente, de ramas

irregularmente cilíndricas, originado de base incrustante. Zooides

hexagonales mucho más largos que anchos, de bordes claramente

definidos sólo en el extremo de las ramas. Sin espinas. La opesia

ovalada ocupa el tercio distal de la pared frontal, cubierta por una

membrana provista de opérculo incompletamente diferenciado. Con

una avicularia epizoecial en el tercio medio de la pared frontal, de

mandíbula triangular larga, angosta, ganchuda; de posición trans-

versal y proximal a la opesia; cámara avicularial irregularmente

cuadrangular con 2 a 4 poros marginales areolares, sobresaliente en

las zoecias del extremo de las ramas y totalmente inmersa e indis-

tinta en las de más abajo, salvo sus dos poros proximales que apa-

recen como tubos infundibulares entre las opesias de las dos zoe-

cias lateroproximales. Ovicela hiperestomial imperforada, - sobresa-

liente y no cerrada por el opérculo, que se hace completamente in-

mersa en las partes bajas de la colonia.

Material estudiado:

Se estudió 40 zoarios que miden entre 1 y 4,5 cm de altura,

obtenidos desde el Hero, el 6 de Octubre de 1972 por el autor a

360 m de profundidad frente a la Isla Topar (50%08,5"S; 74*41"W).

Estas colonias se ramifican dicotómicamente en más de un plano

y se originan desde una base incrustante sobre diversos tubos de

poliquetos.

Observaciones:

Esta especie llama la atención por la extraordinaria reducción

de la opesia limitada al tercio zoecial anterior, la que aparece muy

hundida en las zoecias completamente calcificadas. El gimnocisto

ocupa dos tercios de la pared frontal y da cabida a la avicularia

frontal transversal. Ella hace eminencia en un comienzo para que-

dar posteriormente completamente sumergida en el interior de la

gruesa pared gimnocística por efecto de la depositación calcárea.

Esta avicularia presenta poros areolares que incluso se hacen pre-

sentes cuando está totalmente inmersa.

Las ovicelas son poco abundantes. Las pocas observadas ca-

recen de los poros que Busk señaló al describir la especie.

Aparentemente FF. elliptica es capaz de formar capas unila-

minares sobre sustratos planos, ya que en el lugar de implantación

del zoario, se extiende rodeando al sustrato grandes cantidades de

autozooides. En un zoario se ve que los zooides basales han ye-

mado y formado una nueva capa que toma como sustrato al tallo

erguido. En otra colonia el extremo de una rama puesta en contac-

to con un sustrato deja de ser cilíndrica para aplastarse y seguir

creciendo como una colonia plana.

Desde el punto de vista de la evolución de la pared frontal en

Cheilostomata, esta especie representa una línea opuesta a la de

los Cellariidae, Microporidae, Aspidostomidae y otras familias en

las que el criptocisto —capa calcárea de extensión variable bajo la

pared frontal membranosa— alcanza un desarrollo progresivo has-

ta dejar sólo el espacio para el desarrollo y operación del opérculo,

ya que en vez de desarrollarse aquel se desarrolla el gimnocisto.

Así, dos tercios de la pared frontal están ocupadas por este gim-

nocisto laminar desprovisto de espinas, representando en este sen-

nos Bes

tido una línea evolutiva también divergente de aquellos grupos

familiares en que las espinas tienen la función de proteger a la

pared frontal membranosa como en Hiantoporidae, Arachnopusiidae,

Cribrilinidae, etc. Como queda una opesia anterior cubierta por

una membrana frontal lábil, la selección debe haber favorecido el

desarrollo de la avicularia frontal proximal a la opesia, cuya man-

díbula opera pasando por sobre ella a fin de disminuir los riesgos

que supone la ruptura de la pared frontal o su ocupación por epi-

zoos. De esta manera se constata una vez más la presencia de avi-

cularias como estructuras para el resguardo de áreas zoeciales lá-

biles, como el gran espacio subfrontal en Cellarinellidae, la gran

abertura secundaria de Escharoides, Romancheina y de otros gé-

neros (Moyano, 1968).

Distribución:

La expedición del Challenger obtuvo esta especie en el atlán-

tico (37217'S; 53252"W) a 600 brazas de profundidad y en el Estre-

cho de Bass entre Australia y Tasmania a 38 brazas. Las muestras

aquí estudiadas provienen de 50%08,5'5 y 74*41'W en la costa Pa-

cífica del Extremo sur de América del Sur. Tomando en cuenta

estas localidades tan dispersas se podría decir que la especie es

circumaustral subantártica.

Foveolaria falcifera Busk, 1884

Figs. 16-18

Foveolaria falcifera Busk, 1884: 69, Lám. 15, Fig. 6.

Membranipora falcifera Busk; Waters, 1888: 11.

Membranipora falcifera (Busk); Waters, 1905 : 233, Lám. 28, Figs.

1-5:

Diagnosis:

Zoario incrustante, grueso, muy calcificado. Contorno zoecial

irregular, zoecias alargadas con opesia trifoliada. Pared frontal

membranosa que ocupa los dos tercios distales del frente zoecial

con opérculo incompletamente diferenciado. Criptocisto y espinas

ausentes. Con una gran avicularia en el tercio proximal de la zoe-

cia; de posición transversal, con el rostro curvado hacia la opesia,

con una mandíbula falciforme ancha y un par de procesos laterales

para la articulación de la mandíbula. Esta avicularia que ocupa

todo el ancho zoecial sobresale hacia adelante y arriba quedando

oblicua con relación al plano frontal y por su pared proximal se

observan poros y refuerzos columnares calcáreos. Aparentemente

sin ovicela. Con dietelas en las paredes laterales y distal-proximal.

clio

Material estudiado:

Dos colonias completas casi circulares de 8 y 9 mm de diáme-

tro, y tres trozos irregulares que miden de 1,5 a 2 cm de diámetro,

todos los cuales incluyendo las colonias incrustan un zoario de As-

pidostoma giganteum (Busk), que fueron obtenidos frente a Pun-

ta Chilota en Bahía Inútl, junto al Estrecho de Magallanes, el 20

de Abril de 1962.

Tres fragmentos irregulares que crecen desordenadamente en

una masa constituida por restos de conchas aglomeradas, estilas-

terínidos (Cnidaria, Hydrozoa), esmitínidos, celepóridos e incluso

Jolietina latimarginata (Busk), 1884 (Bryozoa, Cheilostomata), ob-

tenida fuera del Canal Oeste (50936'S; 752%42'W) por el Dr. José

Stuardo, el 22 de Octubre de 1969, a 70 m de profundidad.

Observaciones:

En los resultados de la Expedición del Challenger, Busk señaló

4 especies pertenecientes a Foveolaria. De ellas, tres son arbores-

centes y ramificadas en tanto que F. falcifera es incrustante. Se

distingue esta última además por la carencia de criptocisto y por

el extraordinario desarrollo de la avicularia, que a diferencia de

las otras posee una mandíbula completamente asimétrica. En PF".

falcifera todo el gimnocisto proximal está ocupado por la avicu-

laria, la que se proyecta hacia adelante y arriba formando una ver-

dadera plataforma proximal que a medida que aumenta la calci-

ficación se hace más alta y gruesa haciendo aparecer a la opesia

muy deprimida.

La ancéstrula yema distalmente un primer zooide sin avicula-

ria al igual que ella, pero los demás zooides llevan su correspon-

diente avicularia. Esta que pareciera reemplazar a un zooide en

la serie respectiva está alojada verdaderamente sobre la pared

proximal zooidal, y a lo más, cuando una serie se bifurca aparece

como '“interzoecial”, es decir, desarrollada como una cuña entre dos

zooides pero con mayor parte apoyada en el lado proximal del

zooide a que pertenece.

Desde un punto de vista sistemático esta especie aparece em-

parentada con el género Rhamphonotus al igual que el género

Foveolaria, ya que el carácter diagnóstico de aquél es la presen-

cia de una avicularia erguida en el gimnocisto proximal, condición

que cumple la especie aquí descrita. Sin embargo, se mantiene

aquí el nombre original de Busk en razón de la falta de mayores

antecedentes.

Distribución:

Fuera de Argentina frente a la desembocadura del Río de la

Plata (37217'S; 53252"W) a 1050 m de profundidad (Busk, 1884); es-

tación desconocida en la región del Cabo de Hornos (Waters, 1905)

O Á

y según las muestras aquí estudiadas, Bahía Inútil en el Estrecho

de Magallanes y en el Archipiélago Madre de Dios. Esta distribu-

ción indica que esta especie es propia de las costas atlántica y

pacífica del cono sur de América del Sur.

Smittipora angustilobata n. sp.

Figs. 22-24

Diagnosis:

Zoario incrustante, unilaminar, estrechamente unido al sustrato.

Zooides irregularmente rectangulares, fuertemente calcificados, se-

parados entre sí por surcos no profundos, traslúcidos. Pared frontal

completamente membranosa, con el opérculo de borde engrosado

incompletamente diferenciado de ella y con la inserción de los

músculos depresores inmediatamente por detrás de los bordes la-

teroproximales del opérculo. Criptocisto fuertemente granuloso y

calcificado que deja una opesia con un área un poco superior a

la del opérculo; su parte central desciende desde los bordes y des-

de la parte proximal hacia la opesia. Opesíulas no separadas de

la opesia. Avicularias interzoeciales numerosas más largas que los

autozooides, irregularmente ahusadas con su parte distal larga y

aguda pudiendo ser recta o curvada; mandíbula avicularial trian-

gular larga, con alas lateroinferiores escasamente desarrolladas;

opesia avicularial única o doble dependiendo de la calcificación,

mucho más larga que ancha si es única, y formando dos aberturas

cordiformes si es doble. Ovicelas no advertidas.

El nombre de la especie señala el escaso desarrollo de los

lóbulos laterales de la mandíbula avicularial a diferencia de las

otras especies del género.

Material estudiado:

Una colonia de 1,3 por 2,5 cm que incrusta la parte basal de

un hidrocoral del orden Stylasterina (Coelenterata). El zoario apa-

rece rosado debido a que por ser traslúcido deja ver el color rosa-

do intenso del hidrocoral que le sirve de sustrato. Junto a Smittipora

angustilobata n. sp. crecen otras colonias de briozoos: Chaperiella

cervicornis (Busk), Disporella fimbriata (Busk); Exochella lon-

girostris Jullien y Arachonopusia monoceros (Busk). Este material

fue recolectado desde el Hero fuera del Canal Oeste (50%36'5;

75242'W) por el Dr. José Stuardo, el 22 de Octubre de 1969 a 70 m

de profundidad.

Observaciones:

Esta especie concuerda con las demás del género en la fuerte

calcificación, la gran extensión del criptocisto y la expansión la-

teral de las mandíbulas aviculariales. Difiere de Smittipora levin-

seni Canu y Bassler, S. cordiformis Harmer y de S. abyssicola

(Smitt) en el desarrollo notablemente menor de las expansiones la-

terales de las mandíbulas aviculariales y de S. acutirostris en la

falta de denticiones mandibulares medianas (vea Marcus, 1949,

lám. 2, figs. 5, 6). Por otra parte S. levinseni tiene opesíulas muy

marcadas, de las que carece la nueva especie y su opesia avicu-

larial es mayor.

Tipos:

El holotipo queda depositado en el Museo Zoológico de la Uni-

versidad de Concepción, Chile.

Distribución:

Archipiélago Madre de Dios, Provincia de Magallanes, Chile.

Andreella uncifera (Busk), 1884

Fig. 26

Micropora uncifera Busk, 1884: 71, Lám. 15, Fig. 7.

Micropora uncifera Busk, 1884;; Jullien, 1888 : 180, Lám. 4, Fig. 9,

Lám. 14, Fig. 1-3 (Colocada con este nombre en el nuevo gé-

nero Andreella).

Micropora uncifera Busk, 1884; Calvet, 1904: 20.

Diagnosis:

Zoario incrustante, pluriserial y unilaminar. Zoecias bien calci-

ficadas irregularmente hexagonales a romboidales. Pared frontal

membranosa. Criptocisto completo, granuloso con una gran opesíula

cerrada y reniforme a cada lado. Abertura zooidal semicircular

con el borde proximal más o menos recto; con una espina distola-

teral articulada a cada lado. Con una avicularia transversal tan

alta como ancha, de extremidad ganchuda con mandíbula triangular

ganchuda, desarrollada en el lado proximal de cada zoecia. Ovi-

cela hiperestomial, globosa, muy sobresaliente no cerrada por el

opérculo, con su parte frontoproximal granulosa como el criptocisto.

Material estudiado:

Un zoario de menos de 1 cm? que incrusta un trozo de Sertella

sp. (Bryozoa, Reteporidae) obtenido en el Canal Oeste entre las

Islas Duque de York y Madre de Dios (50%28,5'S: 75214'W) a 25 m

de profundidad, por el autor desde el Hero.

Observaciones:

Esta especie tiene un parecido sólo superficial con las del gé-

nero Micropora en el que Busk (1884) y Calvet (1904) la colocaron.

En efecto A. uncifera tiene ovicela hiperestomial y enormes ope-

síulas laterales, en tanto que Micropora coriacea y especies afines

ato JD is

poseen ovicelas endozoeciales y opesíulas casi o totalmente oclui-

das; y por otra parte la avicularia de A. uncifera es mayor, muy

sobresaliente y epizoecial en la parte proximal de cada zooide. De

acuerdo a estas razones es preciso aceptar el criterio de Jullien

(1888) de considerar a M. uncifera Busk, 1884 como el tipo de

un género independiente, aungue afín a Micropora Gray, 1884.

Distribución:

Tristán da Cunha en el Atlántico (Busk, 1884); Bahía Orange

y Canal Beagle en la parte sur de la Isla de Tierra del Fuego

(Jullien, 1888); Punta Arenas, Canal Smyth, Isla Picton (Calvet, 1940).

Archipiélago Madre de Dios según las muestras aquí estudiadas.

Ogivalia elegans (d'Orbigny), 1847

Figs: «1, 19 y 30

Vincularia elegans d'Orbigny, 1847 :21, Lám. 9, Figs. 25-28.

Ogivalia elegans d'Orbigny; Jullien, 1881.

Vincularia labiata Busk, 1884: 73.

Thalamoporella labiata Busk;; Waters, 1888: 13, Lám. 1, Fig. 23,

Lém:! Lo Fiaso. 120 15,188:

Thalamoporella michaelseni Calvet, 1904: 18, Lám. 2, Figs. la-c.

Thalamoporella labiata (Busk); Waters, 1905:234, Lám. 29, Figs.

6-9.

Hemaiseptella labiata (Busk), Bassler, 1953: G171, Fig. 131, 7.

Ogivalia elegans (d'Orbigny); Bassler, 1953: G169, Fig. 128, 10a-b.

Hemiseptella michaelseni (Calvet); Androsova, 1972, Fig. 11.

Diagnosis:

Zoario arborescente, calcificado, ramificado en varios planos,

de ramas poligonales. Zooides fuertemente calcificados, separados

por surcos no profundos y con los bordes proximal y distal arquea-

dos distalmente. Pared frontal completamente membranosa, sin gim-

nocisto. Opérculo de bordes distal y laterales engrosados e incom-

pletamente diferenciado proximalmente de la pared frontal mem-

branosa. Criptocisto finalmente granuloso, extenso ,que recubre la

mitad o más de la cavidad zoecial, que desciende desde los bor-

des hacia el centro de su borde distal libre doblado abruptamente

hacia abajo; con espinitas o procesos aplastados laminares en sus

bordes laterales y con espinitas de tamaño, número y disposición

variables en su borde distal por encima de la parte que baja abrup-

tamente. Los procesos criptocísticos laterales pueden existir o no,

y pueden o no soldarse entre sí para formar un puente suboral.

Con o sin una pequeñísima avicularia triangular en un rincón zooi-

dal proximal. Aparentemente sin ovicelas.

PP. ee

Material estudiado:

Un trozo zoarial de tres centímetros de altura, ramificado, ob-

tenido por el autor desde el Hero, en el Canal Zenteno (522495; 732

40,7"'W) a 30-40 m de profundidad el 11 de Octubre de 1972. 28 tro-

zos zoariales de 0,5 a 2,5 cm de alto por 0,5 a 3 cm en sentido late-

ral, obtenidos en Porvenir, Isla de Tierra del Fuego, en 1962.

Observaciones:

El zoario que proviene del Canal Zenteno (Fig. 30) corresponde

claramente con el dibujo que Waters (1905, Lám. 29, Fig. 9) da del

especimen del Museo de Historia Natural de París denominado e

ilustrado como Vincularia elegans por d'Orbigny, con el número

13616. Los de Porvenir concuerdan con los ilustrados por ese mis-

mo autor en la Lám. 29, Fig. 8, en los que no existe el puente cal-

cáreo criptocístico suboral pero sí espinitas laterales y proximales.

Sin embargo en zooides viejos de ejemplares de esta última loca-

lidad aparecen los característicos puentes calcáreos, existiendo así

los dos mismos tipos de zooides en un mismo zoario.

La gran variabilidad en la apariencia del criptocisto hizo que

la especie recibiera varios nombres y fuera puesta en varios gé-

neros. Ante la variedad de los nombres usados que llegan hasta el

presente (Androsova, 1972) es conveniente atendiendo a las leyes

de prioridad, conservar el nombre de d'Orbigny que Waters (1905)

reconoció pero no adoptó, y el género Ogivalia propuesto por Jullien

para la especie de d'Orbigny. De esta manera no puede seguir

usúándose el nombre genérico Hemiseptella Levinsen, 1909 por co-

rresponder a Ogivalia Jullien, 1881.

Distribución:

Fuera del Cabo de Hornos y en las Islas Malvinas (d'Orbigny,

1847); Atlántico Sur en 37217'S; 53252'W (Busk, 1884); al oeste de

la Patagonia en 44?14'S; 61223"W (Calvet, 1904); Tierra del Fuego y

Malvinas (Androsova, 1972), y Estrecho de Magallanes de acuerdo

a las muestras aquí estudiadas.

Cellarinella dubia Waters, 1904

Figs. 9 y 4l

Cellarinella dubia Waters, 1904:58, Lám. 8, Figs. 12ab y Fig.

en text. 2.

Cellarinella dubia Waters, 1905 : 240.

Diagnosis:

Zoario libre, fuertemente calcificado, dividido dicotómicamente,

con ramas de contorno ovalado a cuadrangular y fijo al sustrato

por un conjunto de rizoides basales. Zooides de bordes poco claros

o completamente indefinidos; de pared frontal gruesa, irregular-

mente perforada por poros infundibuliformes que no atraviesan la

pared sino que convergen hacia las areolas marginales. Abertura

zooidal más larga que ancha en los zooides no ovicelados, con un

seno proximal irregular flanqueado por dos avicularias. Sin barra

oral ni avicularia interna por dentro de la abertura zooidal secun-

daria. Avicularias orales pequeñas triangulares que apuntan hacia

arriba y afuera. Pared frontal membranosa subyacente a la frontal

calcificada externa, con un opérculo distal inconspicuo. Ovicelas

hiperestomiales de gran tamaño, inmersas, que hacen leve eminen-

cia frontal.

Material estudiado:

Un trozo colonial de 3,8 cm de alto y una colonia incompleta

con su base intacta también de 3,8 cm de alto. Fueron obtenidos

en Caleta Hale a 40-50 m por la tripulación del Hero, el 1? de Oc-

ttubre de 1972 (47257,4'S; 74237,8"W).

Observaciones:

Esta especie a diferencia de la mayoría dentro del género ca-

rece de barra oral y de avicularias internas, estructuras que per-

feccionan la protección de la gran cavidad presente entre la pared

frontal membranosa interna y la calcárea externa (Moyano, 1968).

A medida que aumenta la calcificación se ocluyen los poros de la

pared frontal externa como en las demás especies, pero en ésta,

además, se tienden a producir engrosamientos calcáreos longitudi-

nales como en las especies de Hornera.

Distribución:

Desde la Antártica al Cabo de Hornos y Estrecho de Magalla-

nes (Waters, 1905), área que se extiende con el hallazgo aquí se-

ñnalado en unos seis grados de latitud hacia el norte hasta el Golfo

de Penas.

Spiroporina pentagona (d'Orbigny), 1847

MIOS. 25, 20 Y 29

Vincularia pentagona d'Orbigny, 1847 : 21; Lám. 10, Figs. 4-6(1842).

Haswellia auriculata Busk, 1884: 173, Lám. 24, Figs. l10a-d.

Haswellia auriculata Busk; Waters, 1905: 238.

Haswellia auriculata Busk; Marcus, 1921: 103, Figs. 6a-e.

Spiroporina pentagona (d'Orbigny); Brown, 1952 : 213, Figs. 148-149.

Diagnosis:

Zoarios arborescentes, ramificados dicotómicamente, de ramas

cilíndricas, originados de base incrustante. Zooides nítidos en los

extremos de las ramas, de bordes laterales rectos y proximalmente

terminados en punta; en vista frontal sólo se ve la mitad distal de

ellos quedando la proximal entre los zooides laterales; con poros

areolares marginales irregulares en forma, número y distribución.

Abertura secundaria variable con una avicularia a cada lado.

Abertura primaria casi circular con un estrecho seno proximal, ce-

rrada por un cpérculo de su forma y dimensión. Avicularias orales

triangulares dirigidas laterodistalmente, que al aumentar la calcifi-

cación pueden llegar a tocarse por su lado interno dejando un es-

piramen proximal. Ovicela hiperestomial, calcificada sólo por sus

contornos dejando su parte central sin calcificar.

Material estudiado:

Ocho zoarios obtenidos por el autor desde el Hero, el 6 de Cc-

tubre de 1972 a 360 m frente a la Isla Topar (50%08,5'5; 74*41"W).

Estos son ramificados y miden de 0,9 a 1,7 cm.

Observaciones:

Los ejemplares concuerdan con las descripciones de Busk (1884),

de Marcus (1921) y de Brown (1952). En nuestros ejemplares los

bordes lateroproximales de la abertura no llegan a unirse en el

medio para delimitar un espiramen frontal como ha sido señalado

para las poblaciones de Juan Fernández (Marcus, 1921).

Distribución:

Tristán da Cunha, Cabo de Buena Esperanza y Malvinas (d'Or-

bigny); Azores (Jullien y Calvet, Fide Brown 1952: 216); Nueva Ze-

landia reciente y fósil (Brown, 1952); Juan Fernández (Marcus, 1921)

y archipiélago Madre de Dios según nuestras muestras.

Osthimosia magna n. Sp.

Figsy! 3: 20N Ab; 27

Diagnosis:

Zoario libre, ramificado, de ramas irregularmente cilíndricas

que se angostan por sus extremos. Superficie zoarial áspera e irre-

gular por la proyección de los zooides. Zooides aplastados a urceo-

lados con una corrida de areolas no siempre visibles; de paredes

frontales convexas. Abertura secundaria irregular con una avicu-

laria redondeada dirigida proximal o lateralmente y ubicada proxi-

malmente al seno de la abertura primaria. Abertura zoecial prima-

ria casi circular provista proximalmente de un seno corto y relativa-

mente ancho, cerrada por un opérculo de su forma y dimensión.

Avicularias interzoeciales gigantes, sobresalientes, de mandíbula es-

patulada provista de un área traslúcida levemente ovalada en su

tercio proximal. Ovicela hiperestomial libre con un área de menor

calcificación, imperforada, dos a tres veces más ancha que larga.

Colonia de crecimiento longitudinal por yemación distal y de creci-

miento en grosor por yemación parricidal.

El gran desarrollo del zoario de esta especie en relación a otras

del género justifica su nombre.

Material estudiado:

Un gran zoario incompleto del que falta la base, que mide tres

cm hasta la bifurcación en dos ramas que a su vez miden 3,5 y 3,6

cm, una de las cuales termina dividiéndose en tres ramas cortas.

Esta colonia fue recolectada por el autor desde el Hero por medio

de rastra a 30-40 m de profundidad en el Canal Zenteno el 11 de

Octubre de 1972 (52249'S; 73240,7'W).

Observaciones:

El género Osthimosia fue redefinido por Rogick (1955), seña-

lando como caracteres distintivos la presencia de una o dos avicu-

larias tubulares peristomiales y ovicela con tábula impertorada ca-

racterística para cada especie. Entre las especies incluidas en

Osthimosiía por esa misma autora se distinguen dos grupos: las

que presentan dos avicularias peristomiales proximales como Osthi-

mosia bicornis (Busk) y aquellas que poseen sólo una tal como

O. milleporoides Calvet, grupo al que pertenece la nueva especie.

Osthimosia magna n. sp. difiere de O. eatonensis (Busk), O.

milleporoides Calvet, O. bicornis (Busk) y de O. granum (Hincks)

en el tamaño y modo de crecimiento del zoario, que en todas estas

especies es incrustante pudiendo llegar a ser globular (O. bicornis)

a irregularmente fusiforme cuando la base de implantación es muy

angosta. Y difiere de todas ellas en la forma de la tábula que en

la nueva especie es mucho más ancha que larga, en tanto que en

aquéllas es semicircular o triangular. Difiere además de O. granum

en el diferente desarrollo del peristoma, de O. bicornis en el nú-

mero de avicularias peristomiales y de O. milleporoides en la for-

ma de la ovicela. Por último, semeja a O. eatonensis en la forma de

las avicularias interzoeciales gigantes, pero difiere en la ovicela y

en el modo de desarrollo.

Tipos:

El holotipo ,el único ejemplar estudiado, queda depositado en

el Museo Zoológico de la Universidad de Concepción, Chile.

Distribución:

Canal Zenteno en la parte Noroccidental del Estrecho de Maga-

llanes.

e, 7

Osthimosia mamillata n. sp.

Figs: 2/1 42-45

Diagnosis:

Zoario masivo, multilaminar, de crecimiento parricidal, mami-

lado. Zooides erguidos, de contorno casi circular, con poros areo-

lares irregulares en número y disposición, porceláneos a traslúcidos.

Abertura primaria con un seno proximal ancho. Peristoma incom-

pleto más alto proximalmente donde encierra a una avicularia pe-

ristomial de mandíbula semicircular. Avicularia peristomial de ori-

gen lateral que se tuerce para quedar en la línea media, pudiendo

ubicarse a un costado del seno apertural. Avicularias interzoecia-

les grandes, de mandíbulas levemente espatuladas con un área ova-

lada central traslúcida; abundantes y sobresalientes de mandíbula

muy quitinizada. Ovicela hiperestomial, raras, con tábula imperfo-

rada más larga que ancha o al revés.

El nombre de la especie se debe al aspecto mamilar del zoario.

Material estudiado:

Un gran zoario que mide 9 cm de largo por 6 cm de ancho y

por 4 cm de espesor recolectado a 6-1 m de profundidad por H.

Saelzer el 7 de Octubre de 1972 en la Caleta Henry (50%00,3'5; 70?

19,7'W). Este ejemplar representa aparentemente sólo un trozo de

un zoario mayor y su superficie está erizada de gruesas digitaciones.

Observaciones:

Esta nueva especie difiere de O. bicornis por el número de

avicularias peristomiales y por la forma y tamaño del zoario. Di-

fiere de O. milleporoides y de O. granum en el peristoma, tábula

y forma zoarial y de O. magna n. sp. en la forma zoarial y en la

forma de las avicularias interzoeciales. A la especie que más se

acerca es a O. eatonensis de la que difiere, sin embargo, por el

origen asimétrico y por la asimetría de posición casi general de su

avicularia peristomial; en que sus avicularias interzoeciales son más

compactas y menos espatuladas, en la forma zoarial.

Distribución:

Isla Madre de Dios, Provincia de Magallanes.

Turritigera stellata Busk, 1884

Figs? 4,891.34

Turritigera stellata Busk, 1884:130, Lám. 24, Fig. 1.

Turritigera stellata Busk; Waters, 1888: 22, Lám. 1, Figs. 22, 25.

Turritigera stellata Busk; Waters, 1904:76, Lám. 5, Figs. 3a-c;

Lám.-8, Fig 12

Turritigera stellata Busk; Waters, 1905 : 242,

Bras

Diagnosis:

Zoario libre, unilaminar, con aberturas frontales, ramificado irre-

gularmente, adherente por su base, de la que se origina un tronco

que puede dividirse en uno o más planos. Zooides lageniformes en

el extremo de las ramas principales y secundarias e indistintos a

medida que aumenta la calcificación y la edad; con un largo pe-

ristoma más desarrollado distal que proximalmente, que lleva de

una a seis avicularias largamente tubulares; con abertura zoecial se-

cundaria cordiforme cuya punta distal está marcada por la avi-

cularia peristomial que nunca falta; con abertura primaria provis-

ta de un seno proximal estrecho y marcado. Pared zoecial frontal

con poros tubulares en la unión del peristoma con el cuerpo zoecial

y algunos otros entre los límites interzoeciales. Avicularias peristo-

miales siempre presentes y otras epizoeciales dispersas sobre la

superficie zoarial anterior y posterior no siempre presentes. Ovice-

la desarrollada como una hinchazón en el lado proximal del pe-

ristoma.

Material estudiado:

Veinte zoarios que miden de 0,4 a 2,2 cm de altura, ramifica-

dos como abanicos, que provienen de frente a la Isla Topar (508

08,95; 74241"W) recolectados por el autor desde el Hero a 360 m

de profundidad.

Un ejemplar de 1,2 por 2 cm de ancho recolectado casi en el

mismo lugar de la muestra anterior pero a 260 m.

Cinco zoarios provenientes de Caleta Hale (472%57,4'S; 74241'"W)

recolectados mediante red de pesca por la tripulación del Hero a

40-50 m de profundidad. Estos zoarios miden de 0,5 a 2,4 cm de alto

por 0,5 a 2,9 cm de ancho. Estas colonias son ricamente ramificadas

teniendo una apariencia extraordinaria con las especies del géner”

Hornera (Bryozoa, Cyclostomata).

Observaciones:

Los zoarios estudiados difieren un poco de la descripción ori-

ginal de Busk (1884: 130) y de la que señala Waters (1888 y 1904).

Las mayores diferencias están en la forma final del zoario, en el

número de avicularias peristomiales y en la existencia de otras

zoariales y frontales. El nombre de la especie le fue dado por la

formación de una disposición estrellada de sus ramas a partir de

un tronco basal, hecho que no se presenta en nuestros ejemplares

que tienden a ramificarse en un solo plano ¡salvo uno de la caleta

Hale (Fig. 8) que presenta un rudimento de disposición estelar de

sus ramas basales. Busk y Waters señalaron la existencia de 3 a 6

avicularias peristomiales, pero en ejemplares juveniles así como en

el extremo de las ramas de los ya crecidos cada abertura zoecial

presenta sólo una avicularia distal apareciendo posteriormente las

as A

dos avicularias restantes proximales. La mayoría de los peristomas

de los zoarios examinados tiene tres avicularias, apareciendo un

número mayor sólo en ejemplares muy viejos y calcificados. Las

avicularias superficiales zoariales son muy raras en estos ejempla-

res, y en todo caso, no aparece en ninguno de ellos aquel tipo de

avicularia alargada de mandíbula triangular descrita por Busk.

Distribución:

Fuera de Argentina y Uruguay, Cabo de Buena Esperanza

(Busk, 1884); Antártica (Waters, 1904) y región del Cabo de Hornos

(Waters, 1905). Desde el Archipiélago Madre de Dios hasta el Golfo

de Penas según los ejemplares aquí estudiados.

ORTHOPORIDROIDES N. GEN.

Diagnosis:

Zoario libre y erguido, incrustante por su base, claviforme o

ramificado. Zoecias lageniformes en estado juvenil y muy defor-

madas por la calcificación posterior. Abertura zoecial con un seno

proximal angosto y con una avicularia alta, cilíndrica y simétrica

junto y proximal al seno apertural. Opérculo esquizoporeliforme.

Con peristoma alto y ovicela lisa sin perforaciones ni adornos, de-

pendiente de su parte terminal. La ovicela así como la avicularia

turriforme opuesta a ella, de posición distal, lateral o proximal se-

gún el grado de torción del zooide. Ocasionalmente con avicularias

interzoeciales espatuladas.

Especie tipo:

Cellepora armata Hincks, var. erecta Waters, 1888.

Las colonias de la especie tipo semejan a las de Orthoporidra

Canu y Bassler, 1927 de la familia Lekythoporidae, por la forma zoa-

rial y las grandes avicularias turriformes que sobresalen largamen-

te. Sin embargo, la estructura de la abertura primaria es totalmente

diferente pues en Orthoporidra carece de seno proximal, el que

es muy pronunciado en el nuevo género. Aparentemente se trata

de una convergencia de la forma zoarial y avicularial. Diferencias

de esta naturaleza hicieron que Harmer (1957) dividiera el viejo

grupo de los Celleporidae en dos familias distintas: Celleporariidae

dentro de los Ascophora Imperfecta y Celleporinidae en los As-

cophora Vera. ¿ ¡

El nuevo género guarda relación con los Lekythoporidae y los

Celleporidae sensu lato. Recientemente Pouyet (1973) revisó los

Celleporidae y distinguió 6 familias dentro de este complejo, a sa-

ber: Celleporariidae Harmer; Celleporinidae Harmer;, Kleidionelli-

po. - ORO

dae Vigneaux; Hippoporinidae Vigneaux; Dysnoetoporidae Voigt y

Celleporidae Auctt. En la primera familia la abertura es holostoma

(sin seno proximal); en la segunda las aberturas tienen un seno

proximal, una a varias avicularias peristomiales simétricas o asi-

métricas y las ovicelas perforadas o con una tábula frontal; en la

tercera las aberturas tienen forma de ojo de cerradura y todos los

representantes son fósiles; en la cuarta la abertura está provista de

dientes laterales y la ovicela de un área frontal; la quinta con zoe-

cias provistas de ascoporo y la sexta sin caracteres claramente de-

finidos salvo el aspecto celleporiforme de los zoarios y la presencia

de zoecias urceoladas y acumuladas. El nuevo género no cabe en

ninguna de ellas, salvo en la última que se define por su indefi-

nición.

La familia Lekythoporidae que agrupa a zoarios más o menos

erguidos y ramosos fue establecida para géneros cuyo carácter

más relevante es la posición proximal de la ovicela peristomial.

Bassler (1953: G232) incluye en ella los siguientes géneros: Leky-

thopora McGillivray, 1883; Actisecos Canu y Bassler, 1927; Catadysts

Canu y Bassler, 1927; Orthoporidra Canu y Bassler; 1927; Poeci-

lopora McGillivray, 1886 y Turritigera Busk, 1884. En 1957 Harmer

fundó la familia Actisecidae para alojar a Actisecos.

Orthoporidroides n. gen. puede integrar la familia Lekythopo-

ridae por compartir con sus géneros la forma zoarial más o menos

ramificada, el gran desarrollo del peristoma con avicularias turri-

formes asociadas, la presencia de una ovicela desarrollada desde

la parte alta del peristoma en sentido proximal. Si bien no es cons-

tante en el nuevo género la posición proximal de la ovicela, su si-

tuación en esta familia no es forzada porque en Lekythopora perple-

xa Harmer (Harmer, 1957 : 884) las ovicelas tienen posición distal o

lateral. Por otra parte, este mismo autor al definir al género Leky-

thopora señala que la ovicela es un divertículo peristomial proxi-

mal, lateral o distal.

Cellepora petiolata Waters, 1904, debe también integrar este

género de acuerdo a los caracteres señalados por su autor. Así su

opérculo posee un apéndice proximal característico y avicularias

turriformes de mandíbula triangular. Si se observa la mandíbula de

C. petiolata (Waters, 1904, Lám. 29, Fig. 19) se constata su casi

identidad con la de C. armata var erecta Waters, lo que no sucede

con los opérculos sin embargo, hecho que permite distinguirlas co-

mo especies diferentes.

E, AR

Orthoporidroides erectus (Waters), 1888

Figs. 6, 39-40

Cellepora armata Hincks, var. erecta Waters, 1888:36, Lám. 3,

Figs. 4, 41, 43.

Diagnosis:

Zoario libre, ramificado, originado de base incrustante de ra-

mas cilíndricas fuertemente híspidas por la eminencia de las avicu-

larias. Zoecias lageniformes a aplastadas, distintas en el extremo

de las ramas y muy poco aparentes en las zonas intermedias o

basales. Abertura secundaria más o menos circular en el extremo

del peristoma que se prolonga en una avicularia turriforme. Aber-

tura primaria semicircular con un seno proximal muy marcado que

presenta proximalmente un seno profundo y estrecho y proximal a

él la cámara cilíndrica de la avicularia peristomial; con un opércu-

lo quitinizado, esquizoporeliforme, con impresiones musculares ale-

jadas del borde. Con una avicularia peristomial larga y cilíndrica

de mandíbula triangular larga con área central clara alargada y

con un gancho terminal; esta avicularia es siempre proximal al

seno apertural y de dirección opuesta a la de la ovicela. Ocasio-

nalmente con avicularias interzoeciales gigantes provistas de man-

díbulas anchamente espatuladas. Ovicela desarrollada con una di-

latación del extremo peristomial superior distal a la avicularia pe-

ristomial, que según la torción del zooide puede aparecer como

distal, lateral o proximal ¡siempre opuesta al seno apertural y a la

dirección de la mandíbula avicularial peristomial. La ovicela ca-

rece de cualquier área ornamentada, perforada o de menor calci-

ficación.

Material estudiado:

Cinco zoarios recogidos por el autor desde el Hero frente a la

Isla Topar (50%08,5'S; 74?41"W) a 360 m de profundidad, que miden

0,5 a 2 cm de altura y que se ramifican desde la base.

Un zoario de 1,2 cm de alto fuertemente ramificado obtenido

írente a la Isla Inocentes, a 150 m de profundidad el 9 de Octubre

de 1972 (74?53"W; 50*33'5). Y un zoario de 0,7 cm de alto provenien-

te de Canal Zenteno (52%49'5; 73%40,7"W) el 11 de Octubre de 1972

de 30-40 m de profundidad.

Todas estas colonias comienzan incrustando delgados tubos de

poliquetos u otros briozoos ramificados, forman un pequeño tallo

y se ramifican.

Observaciones:

Los ejemplares estudiados concuerdan totalmente con la espe-

cie que describió Waters (1888) proveniente de una muestra re-

ME ya

£s

cogida por el Challenger cerca del Archipiélago Madre de Dios. Es

necesario agregar, sin embargo, la presencia de avicularias inter

zoeciales gigantes anchamente espatuladas (Fig. 36) que Waters

aparentemente no observó. Estas avicularias son perfectamente in-

terzoeciales pues reemplazan a un zooide ordinario.

Distribución:

Cerca del Archipiélago Madre de Dios (Waters, 1888) y desde

la parte noroccidental del Estrecho de Magallanes hasta el Archi-

piélago Madre de Dios según las muestras aquí estudiadas.

Nevianipora milneana (d'Orbigny), 1847

Figs. 46:47

Idmonea milneana d'Orbigny, 1847:20, Lám. 9, Figs. 17-21.

Idmonea milneana d'Orbigny, 1839; Calvet, 1904 : 36.

Tubulipora milneana (d'Orb.); Marcus 1921: 114, Figs. 16a-e.

Nevinipora milneana (d'Orbigny), 1839; Borg, 1944: 93; Lám. 7,

FIGS: 3-0

Nevinipora milneana (Orb.); Androsova, 1968: 58, Figs. 6, LIV.

Diagnosis:

Zoario libre, erguido ¡ramificado dicotómicamente en varios pla-

nos, fijo al sustrato por su base incrustante y mediante rizoides

quenozooidales columnares que se desprenden de la cara inferior

de las ramas. Ramas aplastadas con corridas de 2 a 4 zooides que

alternan a derecha e izquierda confundiéndose en la parte central

donde existen peristomas aislados. Peristomas autozooidales salien-

tes y libres excepto por su base; en cada corrida el más externo es

el más largo. Gonozooides más largos que anchos, gruesos de con-

tornos poco definidos, generalmente ubicados en la bifurcación de

una rama; de eje mayor en el sentido del crecimiento de la colonia,

y cada uno con un oeciostoma casi mediano, aplastado y de con-

torno reniforme, no asociados a peristomas autozooidales.

Material estudiado:

Una colonia muy ramificada y con muchos rizoides de fijación,

que incrusta a Sertella magellensis var. aviculifera recolectada

por H. Saelzer a 25 m de profundidad en Puerto Caracciolo el 5 de

Octubre de 1972 (50%28,5S; 75214'W). Esta colonia mide 5,5 cm por

301 ELA.

Observaciones:

El ejemplar estudiado concuerda perfectamente con las des-

cripciones de los autores anteriores. Llama la atención el tamaño

de los peristomas libres donde la colonia no ha sido alterada, los

DO 20

que se proyectan bastante. También son notables los rizoides que

confieren a la colonia el aspecto de una higuera tropical con raíces

aéreas.

Distribución:

Islas Malvinas (d'Orbigny, 1847, Borg, 1944, Androsova, 1968);

Estrecho de Magallanes (Calvet, 1904); Tierra del Fuego (Borg, 1944);

Juan Fernández (Marcus, 1921); Australia (Fide Androsova, 1968) y

según nuestras muestras, Archipiélago Madre de Dios.

Nevianipora pulcherrima (Kirkpatrick), 1890

Figs. 48-50

Idmonea pulcherrima Kirkpatrick, 1890: 22, Lám. 4, Figs. 6-6b.

Tubulipora pulcherrima Kirk.; Harmer, 1915: 129, Lám. 9, Figs. 1-5.

Idmonea pulcherrima Kirkpatrick; Androsova, 1968 :55, Figs. 5, I,

VIII.

Diagnosis:

Zoarios libres, erguidos, irregularmente ramificados, que tien-

den a extenderse horizontalmente uniéndose aquí y allá al sustrato

por largos rizoides quenozooidales. Ramas angostas, más o menos

torcidas con aberturas zooidales sobresalientes de dos a cada lado

alternando con una central. El zooide más exterior de las ramas es

el más largo. Gonozooides relativamente simples, alargados, no lo-

bulados, desarrollados en la parte media de la cara frontal de las

ramas, con oeciostoma sobresaliente en la mitad de su tercio distal,

de contorno ovalado en sentido lateral e inclinado distalmente en

su tercio terminal. Este gonozooide se sitúa cerca de la bifurcación

de una rama, antes de, cerca de o en ella.

Material estudiado:

Catorce zoarios que miden de 0,8 a 3,5 cm de largo, gráciles,

alargados, provistos de largos rizoides inferiores, recolectados por

el autor el 6 de Octubre de 1972 desde el Hero, frente a la Isla Topar

(50908,5'S; 74?41"W). Los zoarios se desarrollan entre una maraña de

tubos de poliquetos entre los cuales crecían otras especies con

zoarios de la misma apariencia.

Observaciones:

Los ejemplares estudiados concuerdan con los que señala Har-

mer (1915) y Androsova (1968). Difiere sin embargo por una menor

tendencia a dar rizoides que conecten las ramas entre sí y por el

desarrollo discreto de su gonozooide.

Aquí se incluye a esta especie en el género Nevianipora si-

guiendo el criterio de Borg (1944: 77) de considerar en Idmoneidae

sensu Busk especies en las que el zooide más interno de cada

serie es el más largo y no como sucede en esta especie en que es

de un mismo género. De considerarse válido el género Nevianipora,

para ldmonea milneana d'Orbigny, semejante a [dmonea pulche-

rrima Kirkpatrick como ya lo había observado y discutido Harmer

(1915). Ambas especies tienen el mismo tipo de zoario, la misma

manera de crecer, los mismos rizoides, variando en el número de

zooides de las corridas laterales de las ramas y en el gonozooide,

caracteres que las distinguen como especies diferentes, pero dentro

de un mismo género. De considerarse válido el género Nemanipora,

éste debe incluir a Idmonea pulcherrima y a I. milneana.

Distribución:

De acuerdo a Harmer se halla en Ceylán, Indonesia, Estrecho

de Torres, Australia, Japón y según Androsova ,en la Isla Heard

al sur del archipiélago de las Kérguelen. Según las muestras es-

tudiadas: junto a la Isla Topar en la provincia de Magallanes.

Fasciculipora parva n. sp.

Figs. "51-56

Diagnosis:

Zoario libre, ramificado, fijo al sustrato por una base ensancha:

da de la que sale un pequeño tronco ramificado en todas direccio-

nes. Zooides agrupados estrictamente en fascículos cuyas aberturas

están en la parte superior de las ramas. Ramas divididas en todas

las direcciones sin que se fusionen por sus extremos. Gonozooides

de gran tamaño desarrollados en el espacio existente entre dos o

tres ramas, de pared superior casi plana y oeciostoma corto y an-

cho adosado a la pared externa de una de las ramas, no llegando

hasta el borde superior de ella. Superficie superior de las ramas

de irregularmente circular a ovalada con 4 a 15 o más aberturas

zooidales.

El nombre de la especie indica el pequeño tamaño de las co-

lonias en reproducción, en relación al que alcanzan las otras es:

pecies del género.

Material estudiado:

Cinco colonias de 7 a 9 mm de alto recolectadas por el Dr.

Ariel Gallardo, cerca de Porvenir, el 5 de Mayo de 1962 a 46 m

de profundidad. Las colonias se desarrollan sobre trocitos de con-

chas de bivalvos y otros materiales.

BEE; =>

Observaciones:

Esta especie difiere notablemente de las otras dos antericrmen-

te conocidas del área antártica y subantártica, Fasciculipora ra-

mosa d'Orbigny, 1847 y Fasciculipora meandrina Borg, 1944, por

el tamaño y gonozooides y por el tamaño y fusión de las ramas

respectivamente. F. ramosa tiene gonozooides inconspicuos mien-

tras que la nueva especie los tiene inmensamente desarrollados, y

en cuanto al tamaño zoarial, F. parva n. sp. con gonozooides de-

sarrollados es entre 5 y 10 veces más pequeña que F. ramosa. Por

su parte F". meandrina con gonozooides maduros es por lo menos

tres veces mayor que la nueva especie (Vea Androsova, 1968 : 69,

Fig. 12, l) y sus ramas se fusionan por sus extremos superiores, a

diferencia de F. parva n. sp.

Los dibujos 22 y 23 de la lámina 9 con los que d'Orbigny acom-

pañó la descripción de Fasciculipora ramosa muestran un extraor

dinario parecido con los zoarios de la nueva especie aquí descrita,

pero Borg ya en 1926: 382 señala haber visto el tipo de d'Orbigny

al describir el gonozooide de F. ramosa y su ilustración de ella

difiere notablemente de la nueva especie en la estructura gono-

zooidal. Más tarde Borg, 1944: 130, al describir a F. ramosa vuelve

a insistir en haber visto el material de d'Orbigny en el Muséum

d'Histoire Naturelle de París bajo el número 13735 y en atestiguar

la completa identidad entre sus muestras antárticas y el material

tipo del autor francés. En este trabajo se ha seguido el punto de

vista de Borg, y sólo de esta manera se ha considerado como nue-

va a la especie aquí descrita. i

Tipos:

El holotipo y cuatro paratipos quedan depositados en el Museo

Zoológico de la Universidad de Concepción, Chile.

Distribución:

Bahía Inútil en Tierra del Fuego, junto al Estrecho de Maga:

llames.

AGRADECIMIENTOS

El autor manifiesta su reconocimiento al Dr. Ariel Gallardo por

la Recolección de las muestras de la Expedición Centolla del De-

partamento de Pesca y Caza (1962); al Dr. Jorge Stuardo por mues-

tras obtenidas en un crucero del Hero (1969); a la Comisión Nacio-

nal de Investigación Científica y Técnica, Departamento de Biolo-

gía Marina y Oceanografía (U. de Concepción) y a la National

Science Foundation (USA), Instituciones que hicieron posible el

viaje del autor a bordo del R/V Hero a los Canales Magallánicos.

pd cs

ANDROSOVA,

1968

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Ogivalia elegans (d'Orbigny). Colonia ramificada en varios planos.

Osthimosta mamillata n. sp. Gran zoario multilaminar y mamilar,

Osthimosia magna n. sp. Zoario incompleto, de tallo y ramas subci-

líndricas y superficie rugosa.

Turritigera stellata Busk. Colonia horneroide ramificada en un solo

plano.

Hippoflustra variabilis mn. sp. Zoario unilaminar flojamente incrus-

tante. Los bordes se levantan del sustrato, que en este caso está cons-

tituido por tubos de Chaetopterus sp. (Annelida).

Orthoporidroides erectus (Waters). Zoario ramificado irregularmen-

te, que comienza incrustando un tubo de poliqueto.

Fasciculipora parva n. sp. Zoario completo con dos gonozooides ya

muy desarrollados.

Turritigera stellata Busk. Zoario ramificado en más de un plano,

formando una copa incompleta con sus ramas basales.

Cellarinella dubia Waters. Zoario incompleto fijo al sustrato por

rizoides.

NOTA: Todas las figuras, salvo la N? 2, tienen la misma escala de la Fig. 1.

Fig.

10.— Foveolaria elliptica Busk. Extremo de una rama en bifurcación. Son

muy claros los bordes zoeciales, las avicularias y el gimnocisto.

11.— Foveolaria elliptica Busk. Zooide ovicelado. Los poros de la cámara

avicularial (PGA) aparecen proximalmente a las avicularias.

12.— Foveolaria elliptica Busk. “Tallo fuertemente calcificado. Se advier-

ten frontalmente los poros de la cámara avicularial.

13.—Foveolaria elliptica Busk. Zooides del extremo en crecimiento. La

cámara avicularial es notable por sus poros marginales (PCA).

14.— Hippoflustra variabilis n. sp. Zona de una bifurcación; la yema dis-

tal origina la avicularia y la distolateral otra corrida zooidal. (Misma

escala que la de la Fig. 15).

15.— Hippoflustra variabilis n. sp. Puede apreciarse la gran variación en

las espinas marginales de zooide a zooide. Las ovicelas endozoeciales

(OVE) sobresalen ampliamente por la parte proximal del zooide

distal.

16.— Foveolaria falcifera Busk. Parte central de una colonia. La ancés-

trula y el primer zooide distal carecen de avicularias.

17.— Foveolaria falcifera Busk. Las zonas negras corresponden a la ope-

sia. Las grandes avicularias proximales transversales muestran una

cámara (CAV) con perforaciones próximo-frontales.

18.— Foveolaria falcifera Busk. Avicularia con su mandíbula asimétrica.

Fig.

19.— Ogivalia elegans (d'Orbigny). Vista de una bifurcación. El cripto-

cisto se aprecia en las zoecias centrales. Las pequeñas avicularias (AV)

no siempre están presentes.

20.— Osthimosia magna n. sp. Vista de una rama superior. Los zooides

poseen poros areolares marginales.

21.— Osthimosia magna n. sp. Zona de mayor calcificación que la ante-

rior. Destacan aquí la gran avicularia espatulada y la ovicela a me-

dio formar de la zoecia inferior izquierda.

22.— Smittipora angustilobata n. sp. Zooides con su pared frontal in situ

y una avicularia sin su membrana proximal.

23.—Smittipora angustilobata n. sp. Zooides y avicularia sin sus partes

blandas. El criptocisto es muy granuloso.

24.— Smittipora angustilobata n. sp. Mandíbula avicularial.

25.— Spiroporina pentagona (d'Orbigny), 1847. Vista de la parte superior

de una rama. La ovicela carece de calcificación en su parte frontal

central (SN).

26.— Andreella uncifera (Busk), 1884. Zooides limpiados con NaCIO. Son

característicos la ovicela claramente hiperestomial, las espinas orales,

las grandes opesíulas laterales y la avicularia proximal.

27.— Osthimosia magna n. sp. Dos zooides ovicelados. Se aprecia la tábula

(TA) muy alargada lateralmente.

28.—Spiroporina pentagona (d'Orbigny), 1847. Vista de la abertura pri-

maria.

29.— Spiroporina pentagona (d'Orbigny), 1847. Vista de una colonia con

su parte basal adherente.

MEE >

Fig.

30.— Ogivalia elegans (d'Orbigny). Vista de una rama en la que el crip-

tocisto forma un puente suboral. Puede verse el desarrollo progresivo

de ¿él

31.— Turritigera stellata Busk. Aspecto terminal de una rama. Las ovi-

celas aparecen como dilataciones proximales de la abertura.

32.— Turritigera stellata Busk. Vista de una abertura primaria con opércu-

lo. El seno proximal de la abertura es esquizoporeliano.

33.— Turritigera stellata Busk. Parte basal de una rama,

34.— Turritigera stellata Busk. Joven colonia de sólo 16 zooides que co-

mienza incrustando una rama de Cellaria sp.

35.— Orthoporidroides erectus (Waters). Las avicularias turriformes están

siempre opuestas a la gran ovicela peristomial que puede ser distal,

proximal o lateral.

Fig. 36.— Orthoporidroides erectus (Waters). Avicularia interzoecial espatu-

lada. Son muy escasas en las colonias.

Figs. 37 y 38.— Orthoporidroides erectus (Waters). Mandíbula avicularial oral.

Fig.

39.— Orthoporidroides erectus (Waters). Opérculo.

40.— Orthoporidroides erectus (Waters). Vista de la. abertura primaria

y de la cámara avicularial proximal al seno apertural,.

Fig. 41.—Cellarinella dubia Waters. Trozo de una rama poco calcificada. Los

poros areolares muy nítidos en el extremo en crecimiento están

aquí oscurecidos. La ovicela sobresale levemente.

Fig.

42. — Osthimosia mamillata n. sp. Abertura con un seno ancho. Las man-

díbulas aviculariales son muy fuertes. Las áreas achuradas corres:

ponden a zooides en formación.

43.— Osthimosia mamillata n. sp. Mandíbula avicularial.

44a.— Osthimosta mamillata n. sp. Opérculo. Los puntos corresponden a

las inserciones musculares.

44b.— Osthimosia mamillata n. sp. Ovicela con tábula triangular.

45.— Osthimosia mamillata n. sp. Area marginal de zonas coloniales en

expansión. La avicularia oral se origina lateralmente.

46.— Nquianipora milneana (d'Orbigny). Bifurcación de una rama.El

gonozooide (GZ) de contornos poco definidos presenta un oecios-

toma central (OE) característico.

47.— Nevianipora milneana (d'Orbigny). Vista de los rizoides (RZ) que se

desprenden de la cara dorsal de las ramas para adherirse al sustrato

que aquí es Sertella sp.

48.— Nevianipora pulcherrima (Kirkpatrick), 1890. Rama con un gono

zooide en su parte media. El oeciostoma (OE) es muy semejante al

de N. milneana.

49,— Nevianipora pulcherrima (Kirkpatrick). El gonozooide se desarrolla

en una bifurcación pero no se extiende a las dos ramas y es más

bien lateral

50.— Nevianipora pucherrima (Kirkpatrick). Trozo zoarial ramificado que

muestra rizoides quenozooidales que conectan las ramas entre sí

(RQC) y al sustrato (RQS).

Fig. 51.— Fasciculipora parva mn. sp. Zoario que muestra su parte basal in-

crustante a partir del disco basal.

Fig. 52.— Fasciculipora parva n. sp. Zoario mirado por su cara superior. El

gonozooide (GZ) se ha desarrollado entre las ramas y su oeciostoma

(OE) se adosa a una de las ramas.

Fig. 53.— Fasciculipora parva n. sp. Zoario juvenil mirado por su borde distal.

Fig. 54.—Fasciculipora parva n. sp. Vista lateral del extremo superior de

varias ramas. Entre las de la derecha se aprecia el-gonozooide así

como el oeciostoma.

Fig. 55.— Fasciculipora parva n. sp. Vista de un zoario más desarrollado que

el de la figura 51. :

Fig. 56.— Fasciculipora parva nm. sp. Colonia juvenil en vista frontal. El disco

basal (DB) origina un grupo de zooides primeramente incrustantes.

Mi, AA

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, EL

4 DE FEBRERO DE 1974

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

AEREA >

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LA A AIN E

NENA 5

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Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

CasiLLA 301 — CONCEPGIÓN

CHILE

GAYANA

SITO DE- BIOLOGIA

ZOOLOGIA WI 974 N2 31

DEC 26 19;

CONTRIBUCION AL CONOCIMIENTO DE LOS

CRUSTACEOS DECAPODOS DE LA REGION

MAGALLANICA

Por

MARCO A. RETAMAL R.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

INSTITUTO DE” BLOLOCIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR : Mario Alarcón A.

EDITORES

Mario Alarcón A. Lajos Biro B.

Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

GAYANA

NO: DE BLOTOGTA

ZOOLOGIA AA A Nil

CONTRIBUCION AL CONOCIMIENTO DE LOS

CRUSTACEOS DECAPODOS DE LA REGION

MAGALLANICA

Por

MARCO A. RETAMAL R.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO*GAY. “Hist. de Chile, I-: 14 (18780

GONTRIBUCION AL .CONOCIMIENTO DE LOS

CRUSTACEOS DECAPODOS DE 'LA REGION

MAGCGALEANTCEA

MARCO A. RETAMAL R. (*)

LA Par TE

RESUMEN

Se hace un estudio sistemático de la fauna de Decápodos colectados du-

rante la Expedición “Hero 72-4b”.

Se identificó 18 especies (4 especies de Natantia y 14 especies pertenecientes

al Sub Orden Reptantia).

Además se entrega observaciones relacionadas con la ecología de estos

animales.

ABSTRACT

A sistematic account of the Decapod fauna collected during the “Hero

72 -4b” is done.

18 species (4 species of Natantia and 14 belonging to the Sub Order Rep-

tantia) are identified.

Besides, some observations related with the ecology of these animals are

given in this note.

INTRODUCCION

Durante los meses de septiembre y octubre el R/V “Hero” de la Na-

tional Science Foundation de Estados Unidos trabajó en la región magallánica

abarcando el área de Seno Otway, Bahía Inútil, Golfo Xaultegua y Seno

Almirantazgo en la primera etapa, “Hero 72-4”, posteriormente entre el

extremo Noroeste del Estrecho de Magallanes y la boca sur del Golfo de Penas,

“Blero,121- LD;

(*) Departamento de Biología Marina y Oceanografía, Universidad de Concepción, Chile.

eno E

En ambas etapas la investigación estuvo centrada en la obtención de

muestras bentónicas, planctónicas y datos físico-químicos.

Mediante esta comunicación se entrega un análisis cualitativo de los

Decápodos colectados, en la segunda etapa, complementado con observaciones

referentes a su distribución geográfica y batimétrica, coloración, epizoos y

parásitos.

LISTA DE LAS ESTACIONES EN LAS CUALES SE RECOLECTO

DECAPODOS

28.1X.1972. Bahía Sholl, 52044.5' S; 73052.0” W. Buceo, 18.2 metros. Eury-

podius latreillei. Colecta a mano, Zona de las mareas. Halicarcinus planatus,

Nauticaris magellanica. Rastra 18.2 metros. Eurypodius latretlles.

29.1X.1972. Canal Collingwood 51051.0” S; 73042,5” W. Rastra, 327,0 me-

tros. Pasiphaca doflein:.

29.1X.1972. Rada Shinglet, Isla Newton. 51052.0” S, 73044.0' W. Buceo

36.0 metros. Lithodes antarcticus, Acanthocyclus albatrossis.

1.X.1972. Isla Penguin, Canal Messier 47048.0' S, 74047.0 W. Rastra 300

metros. Libidoclaea smithi.

1.X.1972. Boca Seno Baker. Otter trawl. 300 metros. Stereomastis suhmt,

Campylonotus semistriatus.

1.X.1972. Rada Chica, cerca Isla San Pedro. 47047,1” S; 74054,3" W. Buceo

32,7 metros. Munida subrugosa, Lithodes antarcticus, Cancer plebejus, Eury-

podius latrerllei, Peltarion spinosulum, Pilumnoides perlatus.

1.X.1972. Caleta Hale 47057.4* S; 74037.8” W. Otter trawl. 40-50 metros

Eurypodius latreillei, Eurypodius longirostris, Munida gregaria, Munida sub-

TUgOSA.

2.X.1972. Canal Martínez 47048.7” S; 74020.0” W. Rastra, 130 metros

Pasiphaca dofleina.

3.X.1972. Puerto Larenas, Seno Baker. Buceo, 5-10 metros. Peltarion

spinosulum, Eurypodius latreillet.

3.X.1972. Puerto Brown, Canal Baker 48002.5'S; 74002.0'W. Rastra 30 me-

tros. Austropandalus gray!.

3.X.1972. Canal Messier 48008.5' S; 74036.5' W. Rastra 200 metros. Campy-

_ lonotus semistriatus.

6.X.1972. Frente a Isla Topar. 50008.5' S; 74041.0” W. 345 metros. Cam-

pylonotus semistriatus.

7.X.1972. Salida Caleta Henry, Isla Madre de Dios. 50000.3' S; 75019.7' W.

Otter trawl. 32.7 metros. Eurypodius latreiller, Halicarcinus planatus, Pagurus

complus.

7.X.1972. Canal Trinidad 49055.0” S; 75029.0” W, Otter trawl 54.6 metros.

Munida gregaria, Munida subrugosa, Eurypodius latreille:.

8.X.1972. Puerto Alert, Isla Mornington 49051.9” S; 75013.8' W. Otter trawl.

40 metros. Munida gregaria, Munida subrugosa, Peltarion spinosulum.

8.X.1972. Seno Canal Contreras 50026.5' S; 75022.0” W. Rastra 236.6 me-

tros. Peltarion spinosulum.

9.X.1972. Isla Inocentes 50033.0” S; 74053.0 W. Rastra 387, 20 metros.

Eurypodius latreillei.

9.X.1972, Puerto Caracciolo. 50028.5' S; 75014.0” W. Buceo 25 metros.

Nauticaris magellanica, Munida subrugosa, Eurypodius latreillei, Pagurus

comptus.

10,X.1972. Canal Sarmiento, Isla Esperanza, frente grupo Hayes. 51012.0' S;

74005.8' W. Otter trawl, 509 metros. Campylonotus semistriatus.

11.X.1972. Canal Zenteno, Isla Berisso (Islas Porvenir) 52049.0' S; 74040.7'

W. Rastra 36 metros. Eurypodius latreillez, Eurypodius longirostris, Lithodes

antarcticus.

CRUSTACEOS DECAPODOS IDENTIFICADOS EN LAS MUESTRAS

SUB, ORDEN NATANTIA

Sección CARIDEA

Familia Pasiphaeidae

Pasiphaea dofleini Schmitt, 1932

Familia Pandalidae

Austropandalus grayi (Cunningham, 1871)

Familia Hippolytidae

Nauticaris magellanica (A. Milne Edwards, 1891)

Familia Campylonotidae

Campylonotus semistriatus Bate, 1888

SUB ORDEN REPTANTIA

Sección MACRURA

Familia Eryonidae

Stereomastis sumhi (Bate, 1878)

Sección ANOMURA

Familia Lithodidae

Lithodes antarcticus Jacquinot, 184?

Familia Paguridae

Pagurus comptus H. Milne Edwards, 1836

Pagurus gaudichaudi H. Milne Edwards, 1836.

Familia Galatheidae

Munida gregaria (Fabricius, 1793)

Munida subrugosa (White, 1847)

Sección BRACHYURA

Familia Majidae

Eurypodius latreillez Guerin, 1828

Eurypodius longirostris Miers, 1886

Libidoclaea smithi (Miers, 1886)

ja Mp

Familia Hymenosomidae

Halicarcinus planatus (Fabricius, 1775)

Familia Atelecyclidae

Peltarion spinosulum (White, 1843)

Acanthocyclus albatrossis Rathbun, 1898

Familia Cancridae

Cancer plebejus, Poeppig, 1836

Familia Xanthidae

Pilur=aoides perlatus (Poeppig, 1836)

SUB ORDEN NATANTIA

Sección CARIDEA

FAMILIA PASIPHAEIDAE

Pasiphaea dofleini Schmitt, 1932

Pasiphaea dofleini Schmitt, 1932, Journ. Wash. Acad. Sci., vol. 22, p. 333,

pi a

LOCALIDADES:

29.1X.1972. Canal Collingwood; 2.X.1972. Canal Martínez.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Holthuis (1952) y Retamal (1973b) dan como zona de distribución el Es-

trecho de Magallanes, en lugares cercanos a Punta Arenas, de manera que

con estos nuevos registros ampliamos su distribución hasta los 47048.7" S. Con

respecto a la batimetría conocida, sólo en 1973b Retamal indica el primer

registro de 110 metros, con esta nueva colecta se amplía este rango a 327 metros.

FAMILIA PANDALIDAE

Austropandalus grayi (Cunningham, 1871)

Hippolyte grayi Cunningham, 1871, p. 496, Pl. 59, Fig. 8.

Austropandalus grayi (Cunningham) Holthuis, 1952, p. 16, text - Figs. 3-4,

EOCALIDADES:

3,X.1972. Puerto Brown, Canal Baker.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Esta nueva localidad se encuentra entre los límites ya conocidos y dis-

cutidos (Retamal, 1973a); asimismo, la batimetría.

a TE

FAMILIA HIPPOLYTIDAE

Nauticaris magellanica (A. Milne Edwards, 1891)

Hippolyte magellanicus A. Milne Edwards, 1891, p. 46, Pl. 5, Fig. 2.

Nauticaris magellanicus (A. Milne Edwards) Doflein 8: Balss, 1912, Mitt. naturh.

Mus. Hamburg, vol. 29, p. 29.

LOCALIDADES:

28.1X.1972, Bahía Sholl; 9.1X.1972, Puerto Caracciolo.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

“Habita el extremo sur de Sudamérica”. Se ha colectado desde Cavancha,

cerca de Iquique, hacia el extremo austral del continente. Las profundidades

que se conocían van desde 1.8 a 6.5 metros.

Las localidades que se entrega están por lo tanto en los límites ya cono-

cidos; ampliamos su batimetría, hasta los 25 metros (Puerto Caracciolo).

OBSERVACIONES:

Los ejemplares colectados corresponden a hembras ovíferas que presentan

huevos, en estados muy avanzados, siendo muy visibles los cromatóforos y las

manchas oculares.

FAMILIA CAMPYLONOTIDAE

Campylonotus semistriatus Bate, 1888

Campylonotus semistriatus Bate, 1888, Rep. Voy. Challenger, Zool. 24, p. 768,

PL 128 Mies 1602.

LOCALIDADES:

1.X.1972. Boca Seno Baker; 3.X.1972, Canal Messier; 6.X.1972, Canal Sar-

miento, Isla Esperanza, frente al grupo Hayes.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Según Holthuis (op. cit.) está restringida a la región magallánica, en

cambio Torti (1973:73) anota: “esta especie es conocida para las costas de

Chile y Argentina (Tierra del Fuego)”, y señala, en el mapa distribucional,

una latitud aproximadamente a los 420 lat. sur en el Pacífico.

OBSERVACIONES:

Los registros que tenemos para esta especie concuerdan con la distri-

bución de Torti (op. cit.), la localidad más al norte registrada corresponde a

los 41053.3” lat. S., en el Pacífico realizada durante los muestreos del “Academik

Knipovich”.

Los registros batimétricos se encuentran entre los límites ya conocidos,

es decir entre los 30 y los 816 metros mencionados por Holthius (1952).

SUB ORDEN REPTANTIA

Sección MACRURA

Tribu Eryonidea

FAMILIA ERYONIDAE

Stereomastis suhmi (Bate, 1878)

Ele: 1

Pentacheles suhmi Bate, 1878, Ann. Mag. nat. Hist., ser. 5. vol. 2. p. 278.

Stereomastis suhm: (Bate) Bate, 1888, Rep. Voy. Challenger, Zool., vol. 24,

publ Text Bes: 19,439, 98, 'Bl., 15; Figs. 9, 4 (Pentacheles suhmai, «en la

lámina).

LOCALIDADES:

1.X.1972. Boca Seno Baker.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Según Holthuis (op. cit.) “es una especie de aguas profundas conocida

para la parte sur de Sudamérica y Sud Africa”. En la literatura los registros

anteriormente conocidos son: Canal Messier, Oeste de la Patagonia de localidad

para la especie, cerca del Estrecho de Magallanes, frente al Cabo de Buena

Esperanza, Sud Africa.

La localidad que se entrega, a 480 S, se encuentra por lo tanto en los

límites ya conocidos, al igual que la batimetría aquí registrada, 300 metros.

OBSERVACIONES:

Con respecto a esta familia debemos señalar que durante la Expedición

Sotow, leg. 3, se tuvo la oportunidad de colectar una especie que se men-

ciona por primera vez para aguas chilenas, Stereomastis pacifica (Faxon) en

estado Eryoneicus correspondiendo a la que se ha dado en llamar Eryoneicus

agassiz:1 Bouvier, que no corresponde más que a un estado larval de Stereo-

mastis pacifica. Eryoneicus agassizit Bouvier, fue identificada gracias a la co-

laboración del Dr. Lipke Holthuis.

S. suhmi se encuentra entre las especies que Bahamonde (1963) sitúa entre

“los decápodos abismales” que habitan entre los 1.000 y los 2,000 metros,

1.— Stereomastis suhmi. Vista dorsal.

Sección ANOMURA

FAMILIA LITHODIDAE

Lithodes antarcticus Jacquinot, 184?

Lithodes antarcticus Jacquinot, 184?, Pl. 7. Pl. 8, Figs. 9, 14.

LOCALIDADES:

29.X.1972. Rada Shinglet, Isla Newton; 1.X.1972, Rada Chica, cerca de

la Isla San Pedro; 11.X.1972, Canal Zenteno, Isla Berisso (Isla Porvenir).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA

Las indicadas corresponden a nuevas localidades entre los límites previa-

mente conocidos, al igual que la batimetría.

OBSERVACIONES:

No presentan parásitos como ocurre con los ejemplares colectados en

la primera parte de esta expedición, Hero 72-4 (Retamal, 1973a).

FAMIETA PAGURIDAE

Pagurus comptus White, 1847

Pagurus comptus White, 1847, p. 59.

LOCALIDADES:

7.X.1972. Salida Caleta Henry, Isla Madre de Dios; 9.X.1972. Puerto

Caracciolo.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Es una especie muy común en la región magallánica, alcanzando las

Islas Falkland y Montevideo en el Atlántico y hasta Valparaíso por el Pa-

cifico.

Pagurus gaudichaudia H. Milne Edwards, 1836

Pagurus gaudichaudiz Milne Edwards, 1836, p. 269 (localidad tipo, playa de

Valparaíso, Chile).

LOCALIDADES:

1.X.1972, Caleta Hale.

AAA

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Desde Coquimbo, Provincia de Coquimbo, a través del Estrecho de Ma-

gallanes hasta la costa Este de Patagonia (Haig, 1952:24).

OBSERVACIONES:

La batimetría conocida “hasta 55 brazas” dada por Haig (1955) corres-

ponde a la señalada en esta oportunidad.

Esta especie sin lugar a dudas es el más grande de los Paguros; el ejemplar

examinado medía 6.55 cm.

FAMIETASGALATHEIDAE

Munida gregaria (Fabricius, 1793)

Galathea gregaria Fabricius, 1793, p. 473.

Munida gregaria (Fabricius) Miers, 1881, p. 73 (part).

LOCALIDADES:

1.X.1972, Caleta Hale; 7.X.1972, Canal Trinidad; 8.X.1972. Puerto Alert,

Isla Mornington.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Desde Calbuco,. provincia de Llanquihue, alrededor del extremo sur a

través del Estrecho de Magallanes a Tierra del Fuego, e Islas Falkland. Tam-

bién en Nueva Zelandia. La batimetría conocida va desde la playa a los

109 metros.

OBSERVACIONES:

Como se señala (Retamal, 1973b) tanto M. gregaria como M. subrugosa

constituyen por su abundancia y tamaño, fecundidad y batimetría, decápodos

susceptibles de ser explotados en gran escala con fines comerciales,

Munida subrugosa (White, 1847)

Galathea subrugosa White, 1847, p. 66.

Munida subrugosa (White) Dana, 1852, p. 479.

LOCALIDADES:

1.X.1972, Rada Chica, Isla San Pedro; 7.X.1972, Canal Trinidad; 8.X.

1972, Puerto Alert, Isla Mornington; 9.X.1972, Puerto Caracciolo.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Desde Ancud, provincia de Chiloé alrededor del extremo sur de Amé-

rica del Sur y a través dei Estrecho de Magallanes hacia el Norte hasta Mon-

tevideo en la costa Atlántica, en Nueva Zelandia e islas subantárticas y en

el Sur de Australia.

Su batimetría va desde la playa hasta los 109 metros.

Sección BRACHYURA

FAMILIA MAJIDAE

Eurypodius latreille: Guerin, 1828

Fi8. 2

Eurypodius latreillez Guerin, 1828, p. 354, Pl. 14, Figs. 1-11 (localidad - tipo

Islas Falkland).

2.— Eurypodius latreiller. Vista dorsal.

LOCALIDADES:

28:X.1972.. Bahía: Sholle-11972 Rada, Chica cercanisla SanPedio:

1.X.1972, Caleta Hale; 3.X.1972, Puerto Larenas, Seno Baker; 7.X.1972, Salida

Caleta Henry, Isla Madre de Dios; 7.X.1972, Canal Trinidad; 9.X.1972, Puerto

Caracciolo; 11.X.1972, Canal Zenteno, Isla Berisso (Islas Porvenir).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Desde Bahía Independencia, Perú, hasta el Estrecho de Magallanes y

Tierra del Fuego; hacia el Norte, por el Atlántico, hasta el Golfo de San

Matías, Argentina. Extralimitalmente: Río de Janeiro, Brasil.

La batimetría conocida va desde 4 a 77.5 brazas (Haig. op. cit.). (7,28 a

141 metros).

OBSERVACIONES:

Esta especie siempre presenta su dermoesqueleto cubierto con gran can-

tidad de epibiontes (Briozoos, Algas, Poriferos, etc.).

Eurypodius longirostris Miers, 1886

Fi d y E

Eurypodius longirostris Miers, 1886, p. 23, Pl. 5, Fig. 1, 1% (localidad tipo

“frente a las costas de Chiloé”, debería decir al N. E. de la Isla Madre

de Dios).

LOCALIDADES:

1.X.1972. Caleta Hale; 9.X.1972, Islas Inocentes; 11.X.1972, Canal Zen-

teno, Isla Berisso (Islas Porvenir).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

La única localidad conocida anteriormente corresponde al “N.E. de la

Isla Madre de Dios en aguas de la Patagonia Occidental (o Territorio de

Magallanes, Chile” (Rathbun, 1925:84) (50008.3” S, 74041.0' W).

La batimetría conocida era de 315 metros; se encontró a 324 metros.

OBSERVACIONES:

Esta especie era conocida para una sola localidad, 50008,3”S. Las nuevas

localidades registradas: Caleta Hale (47057.4' S), Islas Inocentes (50083.0' S) y

Canal Zenteno (52049.0' S) amplían en dirección Norte y Sur su distribución.

A diferencia de la especie E. latreillei presenta tanto el caparazón como

los pereiópodos libres de epibiontes, y la relación ancho/largo también es

menor; las espinas rostrales claramente divergentes e inclinadas hacia arriba.

8 DA

3.— Eurypodius longirostris. Vista dorsal.

4.— Eurypodius longirostris. Vista lateral del cefalotórax.

Eibidoclaea smithi (Miers, 1886)

Ele 0

Libinia sm:thii Miers, 1886, p. 73, Pl. 9, Figs. 1-1c (Localidad tipo, frente a

Chiloé, 245 brazas).

Libidoclaea smithit (Miers) Rathbun, 1925, p. 226, Pls. 74, 75; Pl. 231, Fig. 3.

LOCALIDADES:

1.X.1972, Isla Penguin, Canal Messier.

e o E

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

“Desde Calbuco, Chile, al Estrecho de Magallanes”. La batimetría co-

nocida es de 61 a 1.050 brazas (111,02 a 1.911,00 metros) lo que hace de esta

especie un animal archibentónico.

La localidad indicada en este trabajo corresponde a un lugar ubicado en

la boca sur del Golfo de Penas y la batimetría registrada es de 300 metros.

OBSERVACIONES:

El único ejemplar obtenido se encontró sobre fango.

5B.— Libidoclaca smithi. Vista dorsal.

FAMILIA HYMENOSOMIDAE

Halicarcinus planatus Fabricius, 1775

Fig. 6

Cancer planatus Fabricius, 1775, 403 p. (localidad tipo Tierra del Fuego).

Halicarcinus planatus (Fabricius) White, 1846, p. 178, Pl. 2, Fig. 1.

LOCALIDADES:

28.1X.1972, Bahía Sholl; 7.X.1972, Salida Caleta Henry, Isla Madre de

Dios.

ips

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

“Desde Bahía de Taltal, Chile, a través del Estrecho de Magallanes a

las Islas Falkland y desde allí vía Islas Antárticas de las Orcadas del Sur,

Príncipe Eduardo, Kerguelen, Macquarie, Campbell y Auckland a Nueva Ze-

landia” (Doflein y Balss, 1912 en Garth, 1957:33).

La batimetría de esta especie oscila entre 0 y 170 metros (Garth, op. cit.),

y entre 0 a 270 (Doflein y Baiss, 1912 en Garth, 1957).

OBSERVACIONES:

Los ejemplares colectados en Bahía Sholl, en el supralitoral, corresponden

a hembras ovigeras (3 ejemplares).

6.— Halicarcinus planatus. Vista dorsal.

FAMILIAS ATHELECYCLIDAE

Peltarion spinosulum (White, 1843)

Atelecyclus spinosulus White, 1843, p. 345.

Peltarion spinosulum (White) White, 1847, p. 52.

LOCALIDADES:

1.X.1972, rada Chica, cerca de la Isla San Pedro; 3.X.1972, Puerto Larenas,

Seno Baker; 8.X.1972; Puerto Alert, Isla Mornington; 8.X.1972, Entrada Canal

Contreras. Seno Contreras.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Desde Junín e Iquique, Chile, al Sur del Estrecho de Magallanes y

Ushuaia, Argentina, desde allí al norte de Cabo Santa María, Uruguay. Tan

bién en Islas Falkland.

La batimetría conocida es de 0-166.6 brazas (Haig, op. cit.) (0-302,21

metros.

7.—Peltarion spinosulum. Vista dorsal.

Acanthocyclus albatrossis Rathbun, 1898

Fig. 8

Acanthocyclus albatrossis Rathbun, 1898, pp. 598, 599 (localidad tipo Puerto

Otway (Puerto Barroso) Chile).

LOCALIDADES:

29.1X.1972, Rada Shinglet, Isla Newton.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Desde Talcahuano, Chile, a través del Estrecho de Magallanes hasta

las Islas Falkland.

OBSERVACIONES:

Los ejemplares colectados son un macho y una hembra. La relación Ancho -

Longitud cefalotorácica es la siguiente:

3d a ls

92 LCPTAZO

Presentan en general. color granate, el extremo de los dáctilos café ana-

ranjado y las garras blancas.

8.— Acanthocyclus albatrossis. Vista dorsal.

Si o MEA

FAMILIA CANCRIDAE

Cancer plebejus Poeppig, 1836

Cancer plebejus Poeppig, 1836, p. 134 (localidad tipo, Chile).

LOCALIDADES:

1.X.1972, Rada Chica, cerca de la Isla San Pedro.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Desde Ancón, Perú, al canal Picton, Chile (Garth, op. cit.).

La batimetría desde 0 a 15 brazas (27.30 metros). La batimetría registrada

en estos muestreos es de 33.0 metros.

FAMILIA XANTHIDAE

Pilumnoides perlatus (Poeppig, 1836)

Hepatus perlatus Poeppig, 1836, p. 135, Pl. 4, Fig. 2 (localidad tipo, Bahía

San Vicente, cerca de Talcahuano). Chile.

Pilumnoides perlatus (Poeppig) Milne Edwards y Lucas, 1844, p. 21; Atlas,

PL MRS E Alar:

LOCALIDADES:

LLO Rada Chica, cerca dela lsialSanBedro!:

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

“Desde Paita, Perú, al estrecho de Magallanes, extralimitalmente: Isla

Taboga, Panamá. 0-15 brazas” (27,30 metros). (Garth, op. cit.).

OBSERVACIONES:

Tanto los límites latitudinales como la batimetría corresponden a lo ya

conocido para la especie.

Su coloración es roja con pequeños tubérculos negros, muy abundantes

sobre el caparazón y las patas.

CONCLUSION ES

En la presente contribución al conocimiento de nuestra fauna carcino-

lógica se entrega un estudio realizado sobre 18 especies de Decápodos que se

agrupan en 4 especies del Suborden Natantia, Sección Caridea; 14 al Sub-

orden Reptantia de los cuales 1 especie pertenece a la Sección Macrura, 5

especies a la Sección Anomura y 8 especies a la Sección Brachyura.

La zona mucstreada abarca desde el extremo N.E. del Estrecho de Maga-

llanes hasta la boca Sur del Golfo de Penas.

La mayoría de estas especies habían sido recolectadas entre los límites

latitudinales aquí señalados, asimismo la batimetría prácticamente responde

a lo ya conocido. Sólo para Pasiphaea dofleini Bate, especie poco conocida, se

amplía su rango desde los 110 metros hasta los 327 metros; para Nauticaris

magellanica se amplía también este rango hasta los 25 metros; en otros casos

este parámetro varía escasamente.

Con respecto a Eurypodius longirostris Miers, su distribución geográfica

fue ampliada tanto al Norte como al Sur del único lugar en que se había

colectado.

AGRADECIMIENTOS

A CONICYT que permitió a nuestros colegas del Departamento de Biología

Marina y Oceanografía participar en esta etapa de la Expedición del R/V

“Hleroiualeyla NiS:E¿ de U¡StA.

A la Universidad de Concepción por darnos las facilidades necesarias para

realizar este estudio.

Al Prof. Sr. Hugo 1. Moyano por la obtención de estas muestras.

A mis colegas Sr. Jorge Hermosilla S. por sus valiosas sugerencias y

comentarios, y al Sr. José Bustos por sus excelentes dibujos.

BEBLTO (GRA ELA

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and another Annulosa, principaly from the collection of the

British Museum, Ann. Mag. Nat. Hist., ser. 1, Vol. 12, pp. 342-

346.

1856 Some remarks on Crustacea of the genus Lithodes, with a brief

description of a specie apparently hitherto unrecorded Procc.

Zool. Soc. London, 1856, pp. 132-135, pl. 42.

La)

— ay —

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

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CasiLLA 301 — CONCEPCIÓN

CHILE

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GAYANA

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ZOOLOGIA ETS N2 32

COPEPODOS CALANOIDEOS DE LA BAHIA DE

CONCEPCION, CHILE. CONOCIMIENTO

SISTEMATICO Y VARIACION ESTACIONAL

DAGOBERTO F. ARCOS R.

SONIA

Fee 23 1976

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

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COPEPODOS CALANOIDEOS DE LA BAHIA DE

CONCEPCION, CHILE. CONOCIMIENTO

- SISTEMATICO Y VARIACION ESTACIONAL

por

DAGOBERTO F. ARCOS R.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del pais hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, 1 : 14 (1848).

COPEPODOS CALANOIDEOS DE LA BAHIA DE

CONCEPCION, CHILE. CONOCIMIENTO

SISTEMATICO Y VARIACION ESTACIONAL

por

DAGOBERTO F. ARCOS R. (*)

RESUMEN

Se ha estudiado los Copépodos Calanoídeos encontrados en 136 muestras

planctónicas superficiales y de 52 muestras planctónicas verticales, en el pe-

ríodo comprendido entre agosto de 1971 a abril de 1973 en la Bahía de

Concepción, Chile (36940” lat. S. y 73902” long. W.).

Se determinó un total de 19 taxa todos ellos conocidos anteriormente

para aguas chilenas: Calanus australis, Calanus chilensis, Calanoides patago-

niensis, Rhincalanus nasutus, Eucalanus inermis, Paracalanus parvus, Drepa-

nopus forcipatus, Aetideus armatus, Scolecithricella bradyi, Metridia longa,

Metridia brevicauda, Pleuromamma borealis, Pleuromamma gracilis, Pleuro-

mamma xiphias, Centropages braquiatus, Lucicutia flavicornis, Heterorhabdus

spinifrons, Acartia tonsa y Haloptilus sp.

Se analizó datos de abundancia relativa, frecuencia, variación estacional,

rangos de temperatura y salinidad superficial en las estaciones muestreadas y

la posible relación de ellos con las especies encontradas allí.

ABSTRACT

A systematic study on Calanoid Copepods found in 136 surface plank-

tonic hauls and 52 vertical hauls collected from august 1971 till april 1973

in Bahía Concepción, Chile (36940” Lat. S. and 73902 long. W.) has been

carried out.

A total of 19 taxa, all of them know previously for Chilean waters, were

found: Calanus australis, Calanus chilensis, Calanoides patagoniensis, Rhin.

calanus nasutus, Eucalanus inermis, Paracalanus parvus, Drepanopus forcipatus,

Aetideus armatus, Scolecithricella bradyi, Metridia longa, Metridia brevicauda,

Pleuromamma borealis, Pleuromamma gracilis, Pleuromamma xiphias, Centro-

pages braquiatus, Lucicutia flavicornis, Heterorhabdus spinifrons, Acartia tonsa

y Haloptilus sp.

(*) Departamento de Biología Marina y Oceanografía, Universidad de Concepción, Chile.

INTRODUCCION

El conocimiento que se tiene sobre los Copépodos planctónicos marinos

del Mar Chileno se debe principalmente a expediciones extranjeras que han

recorrido y colectado muestras en el extenso litoral chileno. De las Expedi-

ciones más importantes cabe destacar a “U.S. Exploring Expedition” (1838-

1842); “H.M.S. Challenger” (1873-1876); “Víctor Pisani” (1882-1885); “Alba-

tross” (1882-1876) y “Carnegie” (1828-1829). Recientemente Bjórnberg (1973)

hace un estudio completo sobre la distribución de los Copépodos Calanoídeos

epipelágicos entre Arica y Chiloé en muestras obtenidas por la Expedición

Mar-Chile 1 (1960) y por el “U.S. Eltanin” (1962).

El conocimiento de los Copépodos planctónicos Marinos en publicaciones

nacionales se puede considerar como escaso. La primera referencia es la de

Nicolet (1849) en la Historia Física y Política de Chile, donde describe cuatro

especies de Cyclops; posteriormente Yáñez (1958) cita a Rhincalanus nasutus

para la Bahía de Valparaiso; Fagetti (1962) hace un catálogo de las especies

de Copépodos conocidos hasta esa fecha para nuestras costas; Vidal (1968) da

una interesante visión de los Copépodos Calanoídeos colectados en el litoral

entre Arica y Punta Patache por la Expedición Mar-Chile II (1962); Lépez

(1972) da una interesante visión de los Copépodos Harpacticoides epibiontes

de algas y Arcos (1974) hace una contribución al conocimiento de los Copé-

podos Calanoídeos de la región Magallánica, zona desde la cual no existen

muchas referencias sobre plancton.

AREA ESTUDIADA:

La Bahía de Concepción se encuentra ubicada a los 36040" Lat. S. y a los

73902” Long. W. y abarca una superficie aproximada de 180 Km” (Fig. 1).

La Isla Quiriquina ubicada en sentido Norte-Sur configura dos entradas

a la Bahía, denominadas “Boca Chica” y “Boca Grande”. La primera, al Oeste

de la isla forma un canal con la península de Tumbes de aproximadamente

1 milla de ancho con algunos roqueríos en el sector Noroeste y con profun-

-didades de no más de 18 m; la segunda, al Este de la isla forma un amplio

canal con una anchura de aproximadamente 3 millas en el sector de Punta

Lobería y en el extremo Norte de la Isla Quiriquina, con profundidades de

hasta 45 m.

Los regímenes de vientos determinan que la bahía se encuentre, durante

la mayor parte del año, bajo la acción del Anticiclón del Pacífico Sur Oriental.

Durante los meses de septiembre a abril el viento tiene dirección Sur y Sur-

Oeste con máximas de fuerza 4 de la escala Beaufort. Los vientos asociados

a la depresión tienen dirección Norte y Nor-Este en los meses de abril a

agosto con máximas de fuerza 5 en la escala Beaufort. Estos datos son los

CAEN ANNA AAA AAA EN O

BAHIA DE CONCEPCIOM. | (Mo.Loberia. l

Escala 1:50.000 96 3

Cta. Cochol gue.

0 Pta.Parra.

1 2 9 Estero Lirquen.

O Sir0uEn

> PENCO.

17 Estero Penca.

Pe Le

¿e

EN rec |

Estero el Morro.

TOME.

TALCAHUANO.

Fig. 1.— Bahía de Concepción con las estaciones de muestreo planctónico,

UBICACION GEOGRAFICA DE LAS ESTACIONES DE MUESTREO

Estación

2] E > nc

1 3043, 095 132 05225 W

E IA DNS 73% 02 20” W

3 304 SNS 12259 56; Wi

4 OO INS 12099 /00:4MW

5 369238" 21S 129.59: 9074

6 36:35:10 S 125 094 8 AN

7 369.36 105 737 02 20” W

8 369 38" 48” S 139,02:20; Wi

9 36% 40" 35” S 73% 02 20” W

10 3965.36 2575 73% 04 20” W

11 362.38"227S 130% 37 "W

aportados por Alarcón (1970) y representan un promedio entre los años 1911

a 1950 para la estación Meteorológica de Tumbes.

Los regímenes de mareas en la Bahía de Concepción tienen fluctuaciones

de aproximadamente 1 metro, siendo suficiente para formar una notoria co-

rriente de mareas en el canal de la “Boca-Chica”.

MATERIALES YX. .METODOS:

El material planctónico estudiado en este trabajo proviene de 136 mues-

tras superficiales y de 52 muestras verticales colectadas en el período com-

prendido entre agosto de 1971 a abril de 1973 (ambos meses inclusive) en

estaciones ubicadas en Bahía de Concepción (Fig. 1). La posición geográfica

de las estaciones se adjuntan en el Anexo Il.

El ciclo de muestreo se realizó en dos periodos, el primero de ellos desde

agosto de 1971 a julio de 1972 e incluye la utilización de las estaciones

1, 3, 4, 5, 8, 9, 11; no se obtuvo muestras en los meses de septiembre, mayo

y junio. Se utilizó una embarcación con motor de borda y una red de plancton

tipo “Nansen” de 60 cm de largo y 30 cm de diámetro en la boca con la

parte filtrante de una trama de 220 y. En el segundo período de muestreo

(noviembre de 1972 a abril de 1973) se colectó en la totalidad de las estaciones

menos la estación 4. La colección de las muestras fue realizada desde la L/C

“Lund” utilizando una red de plancton adaptada para colectas verticales con

un largo de 157 cm, una boca de 50 cm de diámetro y una parte filtrante de

100 cm con una trama de 220 y.

Para lograr la homogeneidad en los muestreos superficiales la colección

se realizó en un tiempo de 5 minutos y a velocidad constante. Las muestras

verticales fueron colectadas desde una profundidad cercana al fondo del lugar

de la estación hasta una distancia de 5 m desde la superficie. En las estaciones

1 y 2 no se colectaron muestras verticales por la escasa profundidad del lugar.

Las muestras se fijaron en formaldehído 89%, saturado con Bórax. Pos-

teriormente en el laboratorio las muestras fueron decantadas determinándose

los volúmenes de plancton decantado; luego se realizó la identificación y

conteo de las especies de Copépodos Calanoídeos presentes en la muestra.

Una lupa estereoscópica Leitz Wetzlar fue utilizada para la disección de los

ejemplares y un microscopio Carl Zeiss standar RA para el análisis de las

diferentes partes y posterior dibujo.

Conjuntamente con los muestreos planctónicos se midió la temperatura

y salinidad superficial. La temperatura se midió con un termómetro de in-

versión adosado a una botella Nansen. La salinidad se determinó con un

salinómetro de inducción AutoLab MK II.

SISTEMATICA

Familia CALANIDAE

1.— Calanus australis Brodsky, 1959

Lám. 1, Figs. 1-2

Calanus australis Brodsky, 1959: fide Fagetti, 1962:5; Brodsky, 1961:7; Vidal,

1968:13; Ramírez 1969:34; Bradford, 1972:31; Bjórnberg, 1973:284.

DESCRIPCION:

Cuerpo alargado, redondeado; frente en vista dorsal redondeada (Lám. 1,

Fig. 1). Ultimo segmento torácico con los bordes distales convergentes. En la

hembra, el borde interno del basipodito 1 de la pata 5, dentado, con los

dientes en forma triangular y sin espacio entre ellos (Lám. I, Fig. 2).

El macho no fue encontrado en las muestras.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Antárticos, Pacífico Sur Oriental y Pacífico Sur Occidental.

Frente a la costa chilena Bjórnberg (1973) lo ha citado entre los 1898 (Arica)

y los 5205 (Estrecho de Magallanes).

OBSERVACIONES:

Brosky (1961) hace una comparación entre las especies de Calanus del

hemisferio Sur y del hemisferio Norte. Divide a C. australis en dos variedades

pacificus y atlanticus, que como lo indica el nombre son característicos de

los océanos respectivos. Recientemente Grice y Hulsemann (1967) fíde Ramírez,

1969:34 informan de la presencia de 1 ejemplar de Calanus australis, captu-

rado a 3598 y 699W a profundidades de 2000 y 1000 m.

VARIACION ESTACIONAL:

Esta especie se presentó con una frecuencia del 3.6% (Fig. 2) del total de

muestras superficiales; encontrándose de preferencia en los meses de marzo

y abril. Al parecer presenta una marcada migración vertical (Cuadro 1); de

preferencia en las estaciones 7, 8, 10 y 11. is:

2.— Calanus chilensis Brodsky, 1959

Lám. 1, Figs. 3-5

Calanus chilensis Brodsky, 1959: fide Fagetti, 1962:5; Brodsky, 1961:8.

DESCRIPCION:

Cuerpo no tan alargado y redondeado como en C. australis, y la frente

es más redondeada que en la especie precedente. Ultimo segmento torácico

con los bordes distales divergentes (Lám. I, Fig. 3).

En la hembra, el borde interno del basipodito 1 de la pata 5 dentado,

con dientes no tan triangulares y espaciados entre ellos (Lám. I, Figs. 4 y 5).

Segmento 3 del endopodito de la pata 5 lleva cinco setas.

El macho no fue encontrado en las muestras.

ACARTIA TONSA

PARACALANUS PARVYUS

DREPANOPUS FORCIPATUS

CALANOIDES PATAGONIENSIS

CENTROPAGES BRAQUIATUS

AETIDEUS ARMATUS

ME TRIDIA LONGA

CALANUS AUSTRALIS

RHINCALANUS NASUTUS

PLEUROMAMMA —GRACILIS

CALANUS CHILENSIS

PLEUROMAMMA BOREALIS

METRIDIA BREVICAUDA

EUCALANUS INERMIS

LUCICUTIA FLAVICORNIS

SCOLECITHRICELLA BRADYI

HETERORHABDUS SPINIFRONS

PLEUROMAMMA —XIPHIAS

Fig. 2.— Gráfico de frecuencia para las especies presentes en Bahía de

Concepción.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océano Pacífico Sur Oriental; en la costa de Chile: Bahías de San Vicente

y de Valparaíso.

OBSERVACIONES:

Brodsky (1961) al comparar las especies de Calanus cita a C. chilensis

para muestras obtenidas en las Bahías de San Vicente y de Valparaíso. Esta

especie no ha sido citada por autores posteriores; en nuestras muestras encon-

tramos sólo tres ejemplares que confirmaban la descripción de Brodsky para

esta especie.

VARIACION ESTACIONAL:

Esta especie se presentó con una frecuencia del 1.4% (Fig. 2) del total

de muestras superficiales. Se encontró de preferencia en aguas de la entrada

a la Bahía, a menudo en las estaciones 8 y 9.

3.— Calanoides patagoniensis Brady, 1883

Lám. I, Figs. 6-8

Calanoides patagoniensis Brady, 1883:25 (= Calanus patagoniensis Giesbrecht,

1892:91; Farran, 1929:215); Fagetti, 1962:6; Bjórnberg, 1973:291; Arcos,

1974:219.

DESCRIPCION:

Primera antena tan larga como el cuerpo y el abdomen juntos (Lám. I,

Fig. 6).

Pata 5, ambos sexos, de diferentes tamaños. Así, en la hembra es simé-

trica, no presenta dentado el borde interno del basipodito 1, el cual es

ligeramente convexo (Lám. I, Fig. 8).

En el macho, la pata 5 es asimétrica, larga y delgada; la rama izquierda

con un corto rudimento sobre el segmento 2; la rama derecha con un rudi-

mento de tres segmentos insertados sobre el segmento 1 del endopodito.

Ultimo segmento de la rama derecha con una espina terminal (Lám. l, Fig. 7).

DESCRIPCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Indico y Pacifico. Frente a las costas de Chile ha

sido citada especialmente para la región Magallánica por Brady (1883); Gies-

brecht (1892), Bjórnberg (1973) y Arcos (1974).

Es una especie preferentemente de aguas costeras y se le conoce desde

los 2998 hasta los 5308, frente a las costas de Chile.

OBSERVACIONES:

Brodsky (1965) fide Bradford 1972:14 coloca el género Calanoides junto

al género Calanus. De la misma manera lo hace con los géneros Canthocalanus,

Neocalanus y Nannocalanus, así la familia Calanoidae quedaría con dos gé-

neros, Calanus y Undinula. Este criterio no ha sido aceptado por autores

posteriores.

VARIACION ESTACIONAL:

Es una de las especies más frecuentes con un porcentaje del 51.4%

(Fig. 2) del total de muestras superficiales. Presente durante todo el año con

máximos de abundancia en los meses de enero y noviembre con un mínimo

en abril (Fig. 3). Cuando presente ocupa todo el área de la Bahía encon-

trándose en todas las estaciones siendo “Medianamente abundante” en el

área de Quiriquina y Tomé en las estaciones 4, 5, 6, 7 y 8 en verano y

“abundante” en el sector de Lirquén en las estaciones 3 y 4 en primavera.

Se encontró en un rango de temperatura entre 10.99 y 15.09 y de una salinidad

entre 30.5%. a 34.5%o (Fig. 4).

Familia EUCALANIDAE

4.— Rhincalanus nasutus Giesbrecht, 1888

Lám. II, Figs. 9-11

Rhincalanus nasutus Giesbrecht, 1888: fide Giesbrecht, 1892:152; Farran, 1929:

220; Sars, 1901:15; Rose, 1933:70; Yáñez, 1958:133; Fagetti, 1962:10; Grice,

1962:183; Bjórnberg, 1963:24; Grice y Hulsemann, 1965:223; Ramírez,

1969:49; Bradford, 1972:24; Bjórnberg, 1973:300; Arcos, 1974:217.

DESCRIPCION:

Cuerpo alargado, primeras antenas en ambos sexos simétricas. El tórax, en

ambos sexos, presentan una espina posterolateral sobre cada lado en los últimos

tres segmentos; además, dos espinas en la región dorsal en los segmentos 3 y 4

torácicos. En el abdomen, ubicado en la región media dorsal del segmento

genital, presenta también dos espinas (Lám. II, Fig. 9). Frente cónica con dos

filamentos rostrales ventrales (Lám. Il, Fig. 11).

En la hembra, la pata simétrica, con una cerda en el segmento 2 y tres

en el segmento 3 (Lám. Il, Fig. 10).

El macho no fue encontrado en las muestras.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Indico, Pacífico y Antártico, frente a las costas de Chile práctica-

mente ha sido citada para todo el litoral por Giesbrecht (1888); Yáñez (1958),

Fagetti (1962), Bjórnberg (1973), Arcos (1974).

OBSERVACIONES:

Es una especie preferentemente de profundidad (100-200 m) aunque ha

sido capturada en superficie en colectas mocturnas por Yáñez (1958).

VARIACION ESTACIONAL:

Especie poco frecuente con un 2.9% (Fig. 2) del total de muestras super-

ficiales. Especie netamente nerítica y de profundidad (Yáñez, 1958); presente

en forma “escasa” en los meses de noviembre y diciembre (Cuadro I) y con

preferencia en las estaciones 6 y 7. Se puede estimar con nuestros datos que

esta especies emigra verticalmente. Presente con un rango de temperatura entre

12.00 a 13.39 y de una salinidad entre 32.7% a 34.4%o (Fig. 4).

C. PATAGONIENSIS

PRESRARV.US

Di FOR.CLPATUS

A. ARMATUS

C. BRAQUIATUS

NT TONSA

Ar ON DE F- MA. JN DEE MA

ASA VIT2Z 19:73

Fig. 3.— Variación mensual en la densidad para las especies más frecuentes

en Bahía de Concepción.

5.— Eucalanus inermis Giesbrecht, 1892

Lám. Il, Figs. 12-16

Eucalanus inermis Giesbrecht 1892:131; Vidal, 1968:20; Bjórnberg, 1973:297.

DESCRIPCION:

Cabeza triangular, terminada en punta (Lám. Il, Figs. 12 y 13). Margen

distal del último segmento torácico redondeado (Lám. II, Fig. 13). Abdomen

con cuatro segmentos; segmento anal fusionada a la furca; ramas furcales

asimétricas, seta 2 de la furca izquierda más gruesa y larga que la derecha

(Lám. II, Fig. 16).

Mandíbula con tres setas en el tercio proximal del segmento 2 del basi-

podito; con dos setas en el primer segmento del endopodito; con tres setas

largas en el segmento 2 del endopodito (Lám. II, Fig. 14). Patas 1 sin seta

interna en el segmento 2 del basipodito (Lám. II, Fig. 15).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico Norte, Indico, Pacífico y Antártico. Esta especie ha

sido referida a la costa chilena entre los 18098 y 3498 por Vidal (1962),

Bjórnberg (1973).

OBSERVACIONES:

Esta especie fue encontrada en pocas ocasiones en Bahía Concepción

(3605, 730W) y preferentemente en pescas verticales. Se aumenta la distri-

bución frente a la costa de Chile hasta los 3698.

VARIACION ESTACIONAL:

Especie poco frecuente con un 0.7% (Fig. 2) del total de muestras super-

ficiales. Presente en el mes de julio estación 4 con una temperatura de 11.50

y una salinidad de 31%o.

Familia PARACALANIDAE

6.— Paracalanus parvus (Claus) Giesbrecht, 1892

Lám. III, Figs. 17-21

(= Calanus parvus Claus, 1863: fide Fagetti, 1962:11); Paracalanus parvus

(Claus) Giesbrecht, 1892; Sars, 1903:17; Farran, 1929:221; Rose, 1933:73;

Grice, 1962:183; Fagetti, 1962:11; Bjórnberg, 1963:27; Ramírez, 1966:9;

Vidal, 1968: 22; Ramírez, 1969:51; Bradford, 1972:34; Bjórnberg, 1973:306.

DESCRIPCION:

Cuerpo de tamaño pequeño; frente y rostro redondeado; márgenes postero-

laterales del último segmento torácico redondeados (Lám. III, Figs. 17 y 18).

Segmento 2 del endopodito de las patas 2 y 3 con una corrida de espinas por

el borde interno (Lám. III, Fig. 19).

En la hembra, la pata 5 es uniformada, simétrica y bisegmentada, con

una espina pequeña terminal y una seta larga (Lám. III, Fig. 20).

En el macho, la pata 5 es asimétrica, unirramosa; la rama derecha

(Lám. III, Fig. 21, lado izquierdo) bisegmentada con dos espinas pequeñas

en el extremo distal; la rama izquierda (Lám. III, Fig. 21, lado derecho) con

5 segmentos, el último de los cuales con dos espinas desiguales (Lám. III,

Fig 21),

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Indico, Pacifico y Antártico. Frente a las costas de

Chile ha sido citada prácticamente para todo el litoral entre los 1898 y los

4005.

OBSERVACIONES:

Es una especie cosmopolita y frente a la costa de Chile ha sido citada

en numerosas oportunidades. En Bahía de Concepción se encuentra en gran

abundancia y muy bien representada.

VARIACION ESTACIONAL:

Una de las especies más frecuentes con un porcentaje del 75.7%, (Fig. 2)

del total de muestras superficiales, Presente durante todo el año en la Bahía

(Cuadro I) y con una abundancia bastante variable con tendencia a ser má-

xima en verano e invierno y mínima en otoño (Fig. 3). En los meses de

primavera la abundancia es menor comparada con los meses anteriores. En

los meses de máxima abundancia (verano e invierno) se distribuye en toda la

Bahía. Así tenemos que en verano es “Medianamente abundante” en el áreas

de Talcahuano estación 1 y “Poco abundante” en las estaciones 4, 9 y 11.

En invierno es “Medianamente abundante” en la estación 4 y “Poco abun-

dante” en el sector de las estaciones 1, 5, 8 y 11.

Se presentó con un rango de temperatura que varía entre los 10.90 a 15.59

y de una salinidad que varía entre 30.4% (Fig. 4). Bjórnberg (1963) cita esta

especie para aguas del Sur del Brasil y la asocia a aguas costeras y en mayor

abundancia que P. aculeatus; Ramírez (1969) encuentra una mayor dominancia

de P. parvus en aguas neríticas frente a Buenos Aires y que estaría reem-

plazando a P. aculeatus dominante en aguas más al norte. En general, los

rasgos de temperatura y salinidad concuerdan con los observados por Ramírez

(op. cit.). En Bahía de Concepción parece concentrarse en aguas de tempe-

ratura alta (15.59).

Familia PSEUDOCALANIDAE

7.— Drepanopus forcipatus Giesbrecht, 1888

Lám. III, Figs. 22-27

Drepanopus forcipatus Giesbrecht, 1888: fide Rimírez, 1969:55 (= Drepanopus

pectinatus; Ramírez, 1966:11; Pallares, 1968:27); Fagetti, 1962:16; Ramírez,

1969:55.

DESCRIPCION:

En las hembras, poseen un cuerpo redondeado, antenas tan largas como

el cefalotórax. El segmento 3 del exopodito de la pata 1 con una espina distal

externa (Lám. III, Fig. 24); seta terminal de los exopoditos de las patas 2, 3

y 4 aserradas (Lám. III, Figs. 25 y 23). Pata 5 es unirramosa, simétrica y bi-

segmentada; los primeros segmentos son redondeados y el último es alargado,

curvado hacia el plano medio sagital y con los bordes extremos pectinados

(Lán TIL Pig. 22).

En los machos, los primeros segmentos de la antena 1 gruesos y con

mechones pilosos hacia el interior; abdomen con cuatro segmentos (Lám. HI,

Fig. 26). Pata 5 unirramosa y asimétrica. La rama derecha con dos segmentos,

el último de los cuales curvado con un gancho; rama izquierda con tres

segmentos (Lám. III, Fig. 27).

y» [CALANOIDES PATAGON!ENSIS Tr* RHINCALANUS NASUTUS

S %o

0332 3334135

Fig. 4.— Diagrama de Temperatura — Salinidad para las especies C. patago-

niensis, R. nasatus, P. parvus, D. forcipatus.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Especie citada por Ramírez (1966) y Pallares (1968) para las regiones

del Atlántico y Pacífico del extremo sur de América. Frente a las costas de

Chile se conoce su distribución desde los 3098 hacia el Sur. Interesante es el

hecho que Vidal (1968), en muestreos realizados entre los 18098 y los 2198,

no anota su presencia.

OBSERVACIONES:

Brady (1883) describe a D. pectinatus con material proveniente de una

estación del “Challenger” realizada al Sur del Océano Indico.

Posteriormente Giesbrecht (1888) describe a D. forcipatus, diferenciada de

D. pectinatus principalmente por: 1) tener menores tallas, 2) por el agrupa-

miento característico de los pelos en los segmentos basales de la antena 1

para el macho y 3) por no tener rudimento de endopodito en la pata 5 del

macho.

Frente a las costas de Chile se le cita exclusivamente para las aguas

cercanas a la costa.

VARIACION ESTACIONAL:

Esta especie presenta un porcentaje de un 55.1% (Fig. 2) del total de

muestras superficiales. Presente en Bahía de Concepción durante todo el año

com una máxima en los meses de enero y febrero (sucesión de verano) y en

julio y noviembre (sucesión de primavera); los mínimos se presentan en los

meses de diciembre, marzo y abril (Fig. 3). Es “poco abundante” en las esta-

ciones 3, 4, 9 y 11 en los meses de verano, en el resto de la Bahía se presentó

en forma “escasa”. Para los meses de primavera es “muy abundante” en las

estaciones 2, 3 y 9; “medianamente abundante” en las estaciones 5, 7 y 11.

Se presentó con un rango de temperatura entre 11.30 a 15.50 y de una sali-

nidad entre 30.4%. a 34.6% (Fig. 4).

Familia AETIDEIDAE

8.— Aetideus armatus (Boeck) Brady, 1883

Lám. II, Fig. 28; Lám. IV, Figs. 29-39

(= Pseudocalanus armatus Boeck, 1872); Aetideus armatus (Boeck) Brady, 1883:

76; Sars, 1903:25; Farran, 1929:228; Rose, 1933:89; Fagetti, 1962:17; Grice

y Hulsemann, 1965:223; Ramírez, 1969:57; Bradford, 1972:36; Bjórnberg,

1973:326.

DESCRIPCION:

Ultimo segmento torácico terminado en punta, sobrepasando el segmento

genital en los machos (Lám. III, Fig. 28) y en las hembras (Lám. IV, Fig. 31).

Rostro acentuado, quitinizado y profundamente escotado (Figs. 29 y 30).

Receptáculo seminal de forma característica con un lóbulo hacia la parte

anterior del segmento genital (Lám. IV, Fig. 32).

En los machos la pata 5 con cinco segmentos, el último de los cuales

es pequeño y piloso por el borde interno (Lám. IV, Fig. 33).

En la hembra, el segmento 3 del exopodito de la pata 4 con tres espinas

exteriores y una espina terminal aserrada (Lam. EV, Higt3ó)

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Indico, Pacífico, Artico y Antártico. Frente a las

costas de Chile ha sido citada prácticamente para todo el litoral, encontrán-

dose su mayor concentración entre los 34095 y los 3995. Vidal (1968) con mues-

tras entre los 1805 y los 2105, frente a la costa norte de Chile, no cita a

Á. armatus.

OBSERVACIONES:

Los géneros de la familia Aetideidae son difíciles de separar y de carac-

terizar. El género Aetideus creado por Brady (1883) agrupa a aquellos ejem-

plares con rostro grande y quitinisado; en el tiempo ha sufrido bastantes mo-

dificaciones y revisiones. Es interesante hacer notar que en los ejemplares

citados por Rose (1933) las prolongaciones del último segmento torácico no

alcanzan a sobrepasar el segmento genital, lo que sí ocurre en los ejemplares

analizados para Bahía de Concepción.

VARIACION ESTACIONAL:

Poco frecuente en Bahía de Concepción con un porcentaje de 9.5%

(Fig. 2) del total de muestras superficiales. Presente en los meses de verano

en forma “escasa” y “poco abundante” en enero y febrero respectivamente

abarcando toda la suprficie de la Bahía (Cuadro I). Presente con un rango de

temperatura de 11.60 a 12.50 y con un rango de salinidad entre 30.4%. a 34.3%

(Fig. 5).

Familia SCOLECITHRIDAE

9.— Scolecithricella bradyi (Giesbrecht) Wilson, 1950

Lám. IV, Figs. 35-41

(= Scolecithrix bradyi Giesbrecht, 1888: fíide Vidal 1968:32; Farran, 1929:243;

Rose, 1933:151); Scolecithricella bradyi (Giesbrecht) Wilson, 1950: fide

Fagetti, 1962:25; Vidal, 1968:32,

DESCRIPCION:

Cefalotórax de forma ovalada, dos veces más largo que ancho (Lám. IV,

Figs. 36 y 37). Ultimo segmento torácico, en vista lateral, terminado en punta

(Fig. 35). En la hembra, los márgenes posterolaterales del último segmento

torácico asimétricos (Lám. IV, Fig. 38).

En la hembra el endopodito de pata 1 unisegmentado; exopodito tri-

segmentado, con una espina externa en los segmentos 2 y 3 (Lám. IV, Fig. 39).

Endopodito de pata 2 bisegmentado; exopodito con tres segmentos el último

de los cuales con tres espinas externas y una seta terminal aserrada (Lám. TV,

Fig. 41). Pata 5 de pequeño tamaño, asimétrico, unirramoso y foliáceo (Lám. IV,

Fig. 40).

El macho no fue encontrado en las muestras.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Esta especie ha sido citada preferentemente para aguas subsuperficiales

sobre los 140 m. En Bahía de Concepción se capturó un solo ejemplar en

una pesca vertical desde 30 m de profundidad.

OBSERVACIONES:

Esta especie se presentó en una sola oportunidad en una colecta vertical

en la estación 6 del mes de febrero de 1973 (Cuadro 1).

Familia MET RIDIIDAE

10.— Metridia longa (Lubbock) Sars, 1903

Lám. V, Figs. 42-45

(= Calanus longus Lubbock, 1854; = Metridia armata Boeck, 1864: fide Sars

1903:117); Metridia longa (Lubbock) Sars, 1903:107; Rose, 1933:177; Fa-

rran, 1948:3; Fagetti, 1962:26; Bjórnberg, 1973:337.

DESCRIPCION:

Ultimo segmento torácico terminado en punta, en vista dorsal (Lám. V,

Fig. 42) y redondeado, en vista lateral (Lám. V, Fig. 43). Segmento 1 del

endopodito de la pata 2 con un gancho de tres puntas (Fig. 45).

En la hembra, la pata 5 unirramosa, de tres segmentos el último de los

cuales con tres setas y el penúltimo con una espina externa (Lám. V, Fig. 44).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Pacífico y Artico. Frente a las costas de Chile ha sido

citada por Bjórnberg (1973) para regiones entre los 1805 y 31095.

OBSERVACIONES:

En Bahía de Concepción, en muestras superficiales y verticales, se en-

contraron varios ejemplares. Se aumenta su distribución frente a las costas

de Chile hasta la latitud 3695.

VARIACION ESTACIONAL:

Especie poco frecuente en Bahía de Concepción con un 669% (Fig. 2) del

total de muestras superficiales. De preferencia en los meses de verano y pri-

mavera siendo “escasa” en las estaciones 1, 3, 8 y 9. Se presentó con un rango *

de temperatura de 10.90 a 12.92 y con una salinidad entre 33.1%. a 34.5%

(Fig. 5).

11.— Metridia Brevicauda Giesbrecht, 1889

Lám. V, Figs. 46-47

Metridia Brevicauda Giesbrecht, 1889: fide Rose, 1933:179; Grice y Hulsemann,

1965:224:

DESCRIPCION:

Muy semejante a M. longa. Se diferencia fundamentalmente por la pre-

sencia de tres segmentos en la pata 5 de la hembra (Lám. V, Fig. 46) con dos

setas terminales y una seta externa en el segmento 2. Otra diferencia con M.

longa es la forma característica del gancho del segmento 1 del endopodito

de la pata 2 que posee solo puntas (Lám. V, Fig. 47).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico y Pacífico. Frente a las costas de Chile se le conoce

desde los 1698 hasta los-469S, capturada generalmente a profundidades de

hasta 6000 m.

OBSERVACIONES:

Es una especie conocida, a menudo, en profundidad. Sin embargo, en

Bahía de Concepción se capturó tres ejemplares dos de ellos en muestras

superficiales.

VARIACION ESTACIONAL:

Poco frecuente con un 0.7% (Fig. 2) del total de muestras superficiales.

Presente de preferencia en los meses de verano en forma “escasa” en la

estación 8. Se presentó con un rango de temperatura entre 10.90 a 12.90 y

con una salinidad entre 33.1%. a 34.5%o.

12.— Pleuromamma borealis Dahl, 1893

Lám. V. Figs. 48-51

Pleuromamma borealis Dahl, 1893: fide Farran, 1929:262; Rose, 1933:182;

Bjórnberg, 1963:51; Bjórnberg, 1973:338.

DESCRIPCION:

El margen lateral derecho del segmento torácico 1 con una protuberancia

de color negro (Lám. V, Figs. 48 y 49). Segmento 1 del endopodito de la

pata 2 con un gancho característico (Lám. V, Fig. 51).

En la hembra la pata 5 con dos segmentos, el segundo de ellos con tres

espinas distales (Lám. V, Fig. 50).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico y Sub Antártico. Frente a la costa de Chile ha sido

citada para regiones entre los 2308 y los 4108,

OBSERVACIONES:

Steuer (1907) y Farran (1929) hacen una revisión del género Pleuromamma

y describen algunas formas; no haremos mención de ellas pues los escasos

ejemplares capturados en Bahía de Concepción no permiten hacer compara-

ciones. P. borealis ha sido citada anteriormente para las costas de Chile y en

Bahía de Concepción se presentó sólo en muestras verticales,

VARIACION ESTACIONAL:

Poco frecuente en Bahía de Concepción con un 0.79% (Fig. 2) del :total

de muestras superficiales. Presente en los meses de verano y de preferencia

en el área de la estación 5 en forma “escasa”. Presente con una temperatura

.de 11.60 y de una salinidad de 34.3%.

Pleuromamma gracilis (Claus) Wolfenden, 1911

Lám. V, Figs. 52-53; Lám. VI. Figs. 54-55

(= Pleuromma gracile Claus, 1863; Giesbrecht, 1892: fide Vidal, 1968:33);

Pleuromamma gracilis (Claus) Wolfenden, 1911:289; Farran, 1929:260;

Rose, 1933:181; Grice, 1962: 218; Fagetti, 1962:27; Bjórnberg, 1963:50;

Vidal, 1968:33; Ramírez, 1969:71; Bradford, 1972:44; Bjórnberg, 1973:338.

DESCRIPCION:

Protuberancia de color negro en el margen derecho del segmento torá-

cico 1, En el macho el abdomen es simétrico Lám. V y Lám. VI, Figs. 52 y 54.

Patas 5 del macho asimétricas, unirramosa; segmento 2 de la rama derecha

con una fuerte espina; un proceso lobular en el segmento 3 de la rama iz-

quierda (Lám. V, Fig. 53). Segmento 1 del endopodito de la pata 2 con un

gancho presente sólo en la rama derecha (Lám. VI, Fig. 55).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Indico y Pacífico. Frente a las costas de Chile ha sido

citada por Bjórnberg (1973) prácticamente para todo el litoral entre los 798

y 5198,

OBSERVACIONES:

Esta especie fue capturada preferentemente en pescas verticales en Bahía

de Concepción.

VARIACION ESTACIONAL:

Presenta una frecuencia de 2.2% (Fig. 2) del total de muestras superfi-

ciales. De preferencia en los meses de verano en forma “escasa” (Cuadro ID).

Se presentó con una temperatura de 11.60 y una salinidad de 34.4%.

Pleuromamma xiphias (Giesbrecht) Giesbrecht, 1892

Lám. VI. Figs. 56 y 57

(= Pleuromma xiphias Giesbrecht, 1889: fide Fagetti, 1962:28); Pleuromamma

xiphias (Giesbrecht) Giesbrecht, 1892: fide Ramírez, 1969:69; Wolfenden,

1911:239; Rose, 1933:181; Grice, 1962:215; Fagetti, 1962:28; Bjórnberg,

1963:51; Bradford, 1972:46; Bjóornberg, 1973:338.

DESCRIPCION:

En el macho, el rostro prolongado en punta, abdomen asimétrico, con

mechones de pelos en diferentes partes (Lám. VI, Fig. 56). Patas asimétricas,

unirramosa; rama izquierda (derecha de la figura) con el segmento 3 lobular

y dos espinas terminales (Lám. VI, Fig. 57).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Pacífico y Antártico, frente a las costas de Chile ha

sido citada para latitudes entre 79S y 3195,

OBSERVACIONES:

Esta especie es citada a menudo para aguas subsuperficiales. En Bahía

de Concepción se capturó un solo ejemplar en pesca vertical en la estación 5

(diciembre 1972), Cuadro 1.

Familia CENTROPAGIDAE

15.— Centropages braquiatus (Dana) Brady, 1883

Lám. VII. Figs. 58-64

(= Pontella braquiata Dana, 1849: fide Fagetti, 1962:28; Ramírez, 1969:75;

= Calanopia braquiata Dana, 1852: fide Fagetti, 1962:28; Ramírez, 1969:

75); Centropages braquiatus (Dana) Brady, 1883:82; Fagetti, 1962:28;

Bjornberg, 1963:44; Ramírez, 1966:15; Vidal, 1968:35; Ramírez, 1969:75;

Bjórnberg, 1973:335; Arcos, 1974:221.

DESCRIPCION:

En la hembra, la primera antena con una espina sobre los segmentos 1, 2

y 5 (Lám. VII, Fig. 58). Márgenes posterolaterales del último segmento torácico

terminados en punta y los márgenes posteriores sinuosos (Lám. VII, Figs. 58

y 62). Segmento genital asimétrico con dos espinas pequeñas a cada lado

(Lám. VIL Fig. 62). Segmento 2 de los exopoditos de la pata 5 con una

proyección interna aguda (Lám. VII, Fig. 59).

En el macho, la primera antena prehensil, con espinas bien desarrolladas

en los segmentos 1, 2 y 5 (Fig. 63), además, las de la parte media fuertes

(segmentos 13, 15 y 16); en los segmentos siguientes 17-19 el margen es fina-

mente dentado (Lám. VII, Fig. 64). Márgenes posterolaterales del último

segmento torácico terminados en punta y con los márgenes posteriores no

tan sinuosos como en la hembra (Lám. VII, Fig. 61). Pata 5 posee en el seg-

mento 2 del exopodito de la rama izquierda cuatro espinas. La proyección

interna del segmento 2 del exopodito de la rama derecha larga y delgada

(Lám. VIL Fig. 60).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Pacífico y Atlántico Sur. Frente a las costas de Chile se le

conoce para todo el litoral entre los 205 y los 5308,

OBSERVACIONES:

Esta especie se presentó en forma esporádica en Bahía de Concepción.

Bjórnberg (1973) informa que C. braquiatus es una especie abundante en

aguas subsuperficiales y constituye más del 40% del total de especies de

Calanoídeos.

VARIACION ESTACIONAL:

Presente con una frecuencia del 16.9% (Fig. 2) del total de muestras

superficiales. De preferencia en los meses de primavera y verano en forma

“escasa” y “poco abundante” en el mes de marzo (Cuadro I). La abundancia

es máxima en los meses de enero y febrero de 1972 y marzo de 1973 (Fig. 3).

No presente en los meses de otoño e invierno. Presente en casi toda la Bahía

en meses de máxima abundancia. Se presentó con un rango de temperatura

entre 11.60 a 14.19 y de una salinidad entre 30.4%. a 34.4% (Fig. 5).

Familia LUCICUTIDAE

16.— Lucicutia flavicornis (Claus) Giesbrecht, 1892

Lám. VII. Figs. 65-67

(= Leuckartiía flavicornis Claus, 1863: fide Brady, 1883:50; Fagetti, 1962:30);

Lucicutia flavicornis (Claus) Giesbrecht, 1892: fide Fagetti, 1962:30; Wolf-

enden, 1911:323; Farran, 1929:262; Rose 1933:192; Grice, 1962:220; Fa-

getti, 1962:30; Bjórnberg, 1963:51; Vidal, 1968:38; Ramírez, 1969:76; Brad-

ford, 1972:46; Bjórnberg, 1973:344; Arcos, 1974.

DESCRIPCION:

Segmento genital en las hembras con una proyección esférica y de posi-

ción ventral (Lám. VIII, Figs. 65 y 66). Seta interna del segmento 2 del exo-

podito de la pata 5 alcanza más allá del nacimiento de la seta interna pro-

ximal del segmento 3 del exopodito; por la parte externa, tres pequeños dientes

antes de las dos espinas laterales en el segmento 3 del exopodito (Lám. VIII,

Fig. 67).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Indico y Pacífico. Frente a la costa Pacífico se le

conoce desde 20N a 4205.

OBSERVACIONES:

En comparación con el resto de las especies de Lucicutia, es L. flavi-

cornis una de las más citadas para nuestras costas. En Bahía de Concepción

se capturaron dos ejemplares verticales en la Estación 6 (Enero, 1973) Cuadro 1.

Familia HETERORHABDIDAE

17.— Heterorhabdus spinifrons (Claus) Wilson, 1932

Lám. VIII, Figs. 68-70

(= Heterochaeta spinifrons Claus, 1863: fide Fagetti, 1962:30); Heterorhabdus

spinifrons (Claus) Wilson, 1932: fide Fagetti, 1962:30; Wolfenden, 1911:

302; Farran, 1929:264; Rose, 1933:202; Grice, 1962:222; Bjórnberg, 1963:

53; Grice y Hulsemann, 1965:224; Bjórnberg, 1973:345; Arcos, 1974.

DESCRIPCION:

Antenas simétricas en ambos sexos, rostro pequeño prolongado en punta

(Lám. VIII, Fig. 68). Pata 5 de la hembra simétrica (Lám. VIII, Fig. 69) con

una fuerte espina interna en el segmento 2 del exopodito de las dos ramas.

En el macho la pata 5 asimétrica (Lám. VIII, Fig. 70). El Basipodito de

la rama izquierda con una espina hacia la región interna próxima a la unión

con el segmento l.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Indico, Pacífico y Antártico. Frente a las costas de

Chile ha sido citada entre las latitudes 798 y 4495. Recientemente, Arcos (1974)

cita esta especie para localidades en el Fiordo Iceberg (48095) y Seno Baker

(4795).

OBSERVACIONES:

Esta especie aparece en forma esporádica en Bahía de Concepción; se

capturaron cuatro ejemplares en pescas verticales, en las estaciones 5, 8 ya

(febrero, 1973), Cuadro 1.

Familia AUGAPTILIDAE

18.— Haloptipus sp.

Lám. IX. Figs. 75-78, 1 ejem.

DESCRIPCION:

Frente redonda con una pequeña protuberancia en el centro; abdomen

corto y furcas simétricas (Lám. IX, Fig. 75). Primera antena izquierda prehensil.

Lámina masticadora de la mandíbula como en la Lám. IX, Fig. 76. Endopodito

de la pata 1 con tres segmentos (Lám. IX, Fig. 77). Endopodito de la pata 3

y 4 con tres segmentos. Segmento 3 de los exopoditos de las patas 3 y 4 con

tres espinas externas y una seta final. Exopodito y endopodito de pata 5 con

tres segmentos en cada rama (Lám. IX, Fig. 78).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Las especies de Haloptilus citadas para nuestro país abarcan una región

entre 2908 y 6305.

OBSERVACIONES:

Se conocen cinco especies del género Haloptilus citadas para aguas chi-

lenas: acutifrons, longicornis, oxycephalus, plumosus y spiniceps. En Bahía

de Concepción se capturó 1 ejemplar, en la estación 8 y que no se atribuye

a ninguna de las especies conocidas,

Familia ACARTIIDAE

19.— Acartia (Acanthacartia) tonsa Dana, 1849

Lám. IX. Figs. 71-74

Acartia tonsa Dana, 1849: fide Rose, 1933:276; Fagetti, 1962:37; Bjórnberg,

1963:64; Ramírez, 1966:19; Vidal, 1968:47; Bjórnberg, 1973:354.,

DESCRIPCION:

En la hembra, los márgenes posterolaterales del último segmento torácico

redondeados (Lám. IX, Fig. 73). Segmento abdominal con los márgenes redon-

deados. Pata 5 con una seta externa, de tamaño ligeramente mayor que la

espina externa que posee sus extremos pectinados (Lám. IX, Fig. 74).

El macho de tamaño inferior a la hembra (Lám. IX, Fig. 71). Pata 5 con

cuatro segmentos en la rama derecha y el segmento 3 con una proyección lo-

bular interna; en la rama izquierda con tres segmentos, el segmento 3 con

dos espinas terminales (Lám. IX, Fig. 72).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA:

Océanos Atlántico, Pacífico y Artico. Frente a las costas de Chile se

conoce desde 808 a 4205,

q? | AETIDEUS ARMATUS T* | METRIDIA LONGA

ACARTIA TONSA

Fig. 5.— Diagramas Temperatura — Salinidad para las especies A. armatus,

M. longa, C. braquiatus, Á. tonsa.

OBSERVACIONES:

Bjórnberg (1963) describe a A. tonsa var. cryophylla. Los ejemplares ana-

lizados en Bahía de Concepción no se ajustan a la descripción de Bjórnberg

para la var. cryophylla.

VARIACION ESTACIONAL:

Especie más frecuente con un 80.89 (Fig. 2) del total de muestras super-

ficiales. Se distribuye a través de todo el año con máximos “muy abundante” y

“abundante” en otoño y primavera respectivamente (Cuadro 1). Se encontró

en toda el área de Bahía de Concepción y al parecer rehuye la influencia

directa de zonas donde existen afluentes de agua dulce y con baja salinidad.

Es “muy abundante” en el área central de la Bahía en las estaciones 2, 3,

8 y 9.

Presente con un rango de temperatura entre 10.90 a 15.50 y de una

salinidad entre 30.4% a 34.6% (Fig. 5). Según Bjórnberg (1963) esta especie

sería indicadora en aguas frías del Sur de Brasil. En Bahía de Concepción

este carácter de indicadora no sería válido por el amplio rango de temperatura

y salinidad en que fue encontrada.

CUADRO: 1

EIN

CALANUS AUSTRALIS

CALANUS CHILENSIS

CALANOIDES PATACONIENSIS

RHINCALANULS NASUTUS

EUCALANUS INERMISa1

PARACALANUS PARvVUS

DOREPANOPUS PECTImMAatUS

AETIDEUS ARMATUS

SCOLECITHRICELLA BRADY!

METRIDIA LONGA

METRIDIA BREVICAUDA

PLEUROMAMMA BOREAL !S

PLEUROMAMMA GRACIL!S

PLEUROMAMMA XI1PMIAS

CENTROPAGES BRAQUIATLS

LUCICUTIA PLAvICOAN:S

HETERORMABDUS SPINIFRONS

HALOPTILUS SP

ACARTIA TONSA£

E= ESCASO P=POCO ABUNDANTE mxMEDIANAMENTE ABUNDANTE

A= ABUNDANTE mM MUY ABUNDANTE»

TEMPERATURA Y SALINIDAD SUPERFICIAL

Diversos estudios en Bahía de Concepción, Yáñez (1971), Carrasco (1974),

Gallardo y Chuecas (Comunicación personal) han considerado como comple-

mento a estudios biológicos las condiciones hidrográficas del área. Con este

propósito se consideraron los parámetros de temperatura y salinidad con la

finalidad de establecer una posible correlación de estos parámetros con la

- distribución estacional, abundancia relativa y fluctuaciones de la comunidad

de Copépodos Calanoideos.

CUADRO Il

AÑO | 1971 1972 | 1973

EST. AÑO INVIERNO PRIMAV. VERANO (OTOÑO INVIERNO PRIMAV. VERANO

R 0.9 20 1:2 lle 0.5 1.0 1.0

TEMPERAT. ze

V 11:6-12.5 11.2-13.2 12,5-15.5 11.3-12.7 11.5-12.0 14.2-15,2 12462

R 1.8 0.3 0.2 0.4 1.8 1.8 0.9

SALINIDAD

V 30.4-32.2 34.0-34.3 34.2-34,4 34.2-34.( 31.8-33.6 29.5-31.3 33.4-34.3

R = RANGOS V — VALORES

Los rangos de temperatura son más amplios en primavera y más estrechos

en invierno. Sin embargo, la salinidad presenta un rango estrecho en verano

y más amplio en invierno,

Con los datos obtenidos no podemos asegurar que exista un ciclo definido

de variación en la temperatura y salinidad superficial con las estaciones del

año (Fig. 6).

DISCUSION Y CONCLUSIONES

SUCESION:

Los mecanismos reguladores de la periocidad en la composición de los

ecosistemas se basan principalmente en la interacción por predación entre los

individuos que forman parte del ecosistema bajo condiciones generales de

equilibrio. La comunidad tiene fluctuaciones en su composición ya sea en

el número de especies o en el número de individuos de cada especie. Estas

fluctuaciones pueden ser diarias, mensuales o anuales. También es de esperar

que la comunidad tenga un ritmo interno, esto es, cambios en la composición

cualitativa de la comunidad de organismos. A esto último se le conoce como

sucesión.

La sucesión observada en Bahía de Concepción consta de dos períodos

de distinta duración (Fig. 7). La primera fluctuación aparece en agosto de

1971 con un máximo en octubre. La sucesión formada en invierno es la más

larga y sus etapas finales se aprecian hasta el verano de 1972. En el verano

de 1972 comienza otra fluctuación con una máxima en enero y que su efecto

se deja sentir hasta fines del mes de abril.

> A

. —=—-. E

ca=:

— INVIERNO

-— PRIMAVERA

---- VERANO

==: OTOÑO

35 S%

Fig. 6.— Gráfico T-S para las condiciones superficiales en las diferentes

estaciones del año.

Es corriente observar una pequeña fluctuación que se forma a partir del

otoño y que no va más allá de los meses de invierno donde se forma una

nueva y más larga fluctuación. No se observó esta pequeña sucesión por la

carencia de muestras en estos meses, en todo caso, en julio y noviembre se

aprecia un máximo lo que podría corresponder a la pequeña sucesión la de

julio y la de mayor amplitud la de noviembre cuyo efecto se deja sentir hasta

el mes de enero de 1973.

27-.

¿3

O 500 — VOLUMEN DECANTADO

< ---- N* DE ESPECIES

= is

< 40 ma. TEMPERATURA MEDIA MENSUAL 15

300 m

3 %

>2 a

5 m 10

100 U

1971 1972 1973

Fig. 7.— Gráfico de Volumen de Plancton decantado. Número de especies

y temperatura media mensual para los diferentes meses.

COMPOSICION DE LA COMUNIDAD:

La composición de la comunidad de Copépodos Calanoídeos se puede

agrupar como sigue:

A.— Siempre Presentes:

Especies con una frecuencia superior al 50% y son: Calanoides patago-

niensis, Paracalanus parvus, Drepanopus forcipatus y Ácartia tonsa.

B.— Estacionales:

Especies con una frecuencia menor al 50% pero mayor al 1% y son:

Calanus australis, Calanus chilensis, Rhincalanus nasutus, Aetideus armatus,

Metridia longa, Pleuromamma gracilis y Centropages braquiatus.

C.— Esporádicas:

Especies con una frecuencia menor al 1% y son: Eucalanus inermis,

Scolecithricella bradyi, Metridia brevicauda, Pleuromamma borealis, Pleuro-

mamma xiphias, Lucicutia flavicornis, Heterorhabdus spinifrons y Halop-

tilus sp.

La presencia en Bahía de Concepción de este grupo de especies puede

deberse al desplazamiento de cuerpos de agua que se introducen a la bahía

en alguna época del año. Todas estas especies fueron capturadas de prefe-

rencia en las colectas verticales, de aquí que la fauna de Copépodos Cala-

noídeos mo la consideramos absoluta para el área estudiada.

CORRELACION DE LA SUCESION CON LA

TEMPERATURA. Y SALINIDAD.

La fluctuación de la sucesión se encuentra relacionada en forma clara

con la temperatura ya que ambas siguen aproximadamente la misma ten-

dencia (Fig. 7). En períodos de máxima fluctuación los rangos de temperatura

son amplios (Cuadro Il).

La salinidad presenta un rango amplio de variación en períodos que

corresponde una mínima fluctuación en la comunidad.

AGRADECIMIENTOS

Deseo expresar mi especial reconocimiento para con el Dr. Lisandro

Chuecas, Prof. Hugo Saelzer y Lic. Jorge G. Hermosilla por la valiosa

ayuda, comentarios y críticas durante la realización de este trabajo.

Deseo hacer extensivos estos agradecimientos al Dr. George D. Grice

(WHOTD), Dr. Janet M. Bradford (NZOI) y Dr. Fernando Ramírez (Mar del

Plata) por la valiosa ayuda para la realización de este trabajo.

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51.2, 3):135-142:

Calanus australis. Fig. 1: Hembra, vista dorsal; Fig. 2: Hembra, pata 5; Calanus

chilensis; Fig. 3: Hembra, últimos segmentos torácicos y abdomen, vista dorsal;

Fig. 4: Hembra, pata 5; Fig. 5: Hembra, basipodito 1 de la pata 5; Calanoides

patagoniensis; Fig. 6: tórax y abdomen, vista lateral; Fig. 7: Macho, pata 5;

Fig. 8: Hembra, pata 5.

DAMINA TAL

2000u

IN y yA

A y

VIA

VNS

vos

ñ Pa y no

Rhincalanus nasutus. Fig. 9: tórax y abdomen, vista dorsal; Fig. 10: Hembra,

pata 5; Fig. 11: cabeza, vista lateral; Eucalanus inermis; Fig. 12: cabeza, vista

lateral; Fig. 13: vista dorsal del cuerpo; Fig. 14: segmento 2 del basipodito

de la mandíbula; Fig. 15: pata 1; Fig. 16: últimos segmentos abdominales y

ramas furcales, vista dorsal.

LÁMINA 111

Paracalanus parvus. Fig. 17: cuerpo, vista dorsal; Fig. 18: último segmento

torácico, vista dorsal; Fig. 19: pata 2; Fig. 20: Hembra, pata 5; Fig. 21: Macho,

pata 5; Drepanopus pectinatus; Fig. 22: Hembra, pata 5; Fig. 23: Hembra,

pata 4; Fig. 24: Hembra, pata 3; Fig. 25: Hembra, pata 2; Fig. 26: Macho, vista

dorsal de la frente y antena 1; Fig. 27: Macho, pata 5; Aetideus armatus;

Fig. 28: último segmento torácico.

LÁMINA IV

1000 uy

amm»

100

Aectideus armatus. Fig. 29: vista dorsal del cuerpo; Fig. 30: vista lateral del

cuerpo; Fig. 31: Hembra, vista dorsal del último segmento torácico; Fig. 32:

Hembra, receptáculo seminal, vista lateral; Fig. 33: Macho, pata 5; Fig. 34:

Hembra, segmento 3 de la pata 4; Scolecithricella bradyi; Fig. 35: último

segmento torácico, vista lateral; Fig. 36: vista dorsal del cuerpo; Fig. 37: vista

lateral del cuerpo; Fig. 38: último segmento torácico, vista dorsal; Fig. 39:

Hembra, pata 1; Fig. 40: Hembra, pata 5; Fig. 41: Hembra, pata 2.

LÁMINA V

Metridia longa. Fig. 42: vista dorsal del cuerpo; Fig. 43: vista lateral del cuerpo;

Fig. 44: Hembra, pata 5; Fig. 45: Hembra, pata 2; Metridia brevicauda; Fig. 46:

Hembra, pata 5; Fig. 47: Hembra, segmento 1 del endopodito de la pata 2;

.Pleuromamma borealis; Fig. 48: vista dorsal del cuerpo; Fig. 49: vista lateral

del cuerpo; Fig. 50: Hembra, pata 5; Fig. 51: Hembra, pata 2; Pleuromamma

gracilis; Fig. 52: vista dorsal del cuerpo; Fig. 53: Macho, pata 5.

LÁMINA VI

Pleuromamma gracilis. Fig. 54: vista lateral del cuerpo; Fig. 55: Macho, seg-

mento 1 del endopodito de la pata 2; Pleuromamma xiphias; Fig. 56: Macho,

“vista dorsal del abdomen; Fig. 57: Macho, pata 5.

250 u

2504

250 uy

LÁMINA VII

Centropages braquiatus. Fig. 58: Hembra, vista dorsal del cuerpo y antena 1;

Fig. 59: Hembra, pata 5; Fig. 60: Macho, pata 5; Fig. 61: vista dorsal del último

segmento torácico del Macho; Fig. 62: vista dorsal del último segmento torácico

de la Hembra; Fig. 63: segmentos 1, 2 y 5 de la antena 1 en el macho; Fig. 64:

segmentos de la parte media de la antena 1 en el macho,

TÁ Mina dd VTA

Lucicutia flavicornis. Fig. 65: Hembra, vista dorsal del cuerpo; Fig. 66: Hem:

bra, vista lateral del cuerpo; Fig. 67: Hembra, pata 5; Heterorhabdus spini-

frons; Fig. 68: vista dorsal del cuerpo; Fig.:69: Hembra, pata 5; -Fig. 70: Macho;

pata 5.

250

LÁMINA IX

Acartia tonsa. Fig. 71: Macho, vista dorsal del cuerpo; Fig. 72: Macho, pata 5;

Fig. 73: Hembra, vista dorsal del cuerpo; Fig. 74: Hembra, pata 5; Haloptilus

sp.; Fig. 75: Macho, vista dorsal del cuerpo; Fig. 76: lámina masticadora de la

mandíbula; Fig. 77: Macho, pata 1; Fig. 78: macho, pata 5.

ÍNDICE DE MATERIAS

Págs

A 3

EIN Da AE LE A A A A a)

INTRODUCCIÓN 53.10. ETA Di E BERADIA Ed iicrenccraiaizan 4

A A DA A A 4

MNEABERTATMES Y METODOS) cnorcocaooacacondionracion cion dna doc onin cinc cscnasd nica nia dond 6

A A o OO Ñ

TEMPERATURA Y SALINIDAD SUPERFIGCIAR. ...oomoocoancosporaacasanianiión 2

DISCUSION VACONGLUSIOINES: eciccacinónmasonacaonnizoriaconeisnsorosdiornaiTocansaincrsnaracato 26

AN O o 29

A o 29

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE LA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE) EL

15 DE ABRIL DE 1975.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

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GAYANA

SILO DE" BIOLOGIA

ZOOLOGIA IE NA 33

EL POLIMORFISMO DE LOS BRYOZOA ANTARTICOS

COMO UN INDICE DE ESTABILIDAD AMBIENTAL

Por

HUGO 1. MOYANO G.

FEB 23 1976

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR : Mario Alarcón A.

EDITORES

Mario Alarcón A. Lajos Biro B.

Waldo Venegas S. Lisandro Chuecas M.

EDITORES EJECUTIVOS:

Jorge N. Artigas Clodomiro Marticorena P.

FAYANA

INSTITUTO DE BIOLOGIA

ZOOLOGIA LTD N2 33

EL POLIMORFISMO DE LOS BRYOZOA ANTARTICOS

COMO UN INDICE DE ESTABILIDAD AMBIENTAL

Por

HUGO I. MOYANO G.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Chile

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, 1 : 14 (1848).

EL POLIMORFISMO DE LOS BRYOZOA ANTARTICOS

COMO UN INDICE DE ESTABILIDAD AMBIENTAL

Por

HUGO I. MOYANO G. (*)

RESUMEN

Se estudió el polimorfismo de más de 800 especies de Bryozoa Cheilos-

tomata, correspondientes a 200 especies del Artico, 437 del Indopacífico, 40

de las Islas Galápagos, 18 de Bahía de Concepción (Chile) y 194 del Antártico.

Se hizo además una comparación entre 61 especies de la Bahía Chile (Isla

Greenwich, South Shetlands, Antártica) contra 18 de la Bahía de Concepción.

El polimorfismo, definido como la existencia de dos o más tipos dife-

rentes de zooides en una especie de briozoo, aparece más desarrollado en las

especies tropicales que en las polares, aunque la diferencia en porcentaje

es menor al comparar especies antárticas con tropicales que entre árticas y

tropicales.

La Bahía Chile supuesta como un sistema ambiental estable muestra más

de un 80%, de especies con uno o más polimorfos (Avicularias y/o vibracu-

larias) contra sólo un 44,5% de las especies conocidas de la Bahía de Con-

cepción, lo que se explica como una consecuencia de la inestabilidad am-

biental.

Al considerar que el polimorfismo de las especies estudiadas alcanza al

71,45%; 84,9%, 85% y 80,99%, para el Artico, Indopacífico, Galápagos y

Antártica respectivamente, y suponiendo que la estabilidad de las presiones

de selección que actúan a nivel zoarial favorece la aparición de individuos

diferentes para actividades diferentes, se infiere aquí, que el mayor polimor-

fismo de los Bryozoa antárticos en relación con los árticos ha sido causado

por la gran estabilidad ambiental que ha debido reinar por dentro de la

convergencia antártica.

ABSTRACT

The polymorphism of more than 800 species of the Bryozoan Order

Cheilostomata, including 200 species from the Arctic Ocean, 437 from the

Indopacific Region, 40 from the Galapagos Islands, 18 from the Bahía de

Concepción (Chile) and 194 from the Antarctic Ocean, was studied. A com:-

parison among 61 species from Bahía Chile (Greenwich Island, South Shetland,

Antartica) and 18 from the Bahía de Concepción was also made.

pan.

Polymorphism, defined as the existence of two or more different types

of zooids in a bryozoan colonial species, is seen more developed in tropical

species than in polar ones, though the percent difference is lesser in comparing

antarctic with tropical species than arctic with tropical ones.

Bahía Chile, which is supposed to be an environmental stable system,

presents more than 80% species with one or more polymorphs (avicularia

and/or vibracularia); this is completely different from Bahía de Concepción

where polymorphism is present only in 44,45%, of the known species, which

can be explained as a consequence of an environmental inestability.

In considering that the polymorphism of the studied species reaches up

to 71,5%; 84,9%; 85% and 80,93%, for the Arctic, Indopacific, Galápagos and

Antarctic respectively, and assuming that the stability of selection pressures

acting at zoarial level favours the appearence of different individuals for

different activities, it is here inferred that the greater polymorphism of the

antarctic Bryozoa in relation to the arctic ones, has been caused by the great

environmental stability inside the antarctic convergence.

INTRODUCCION

Recientemente Schopf (1973) ha postulado que el polimorfismo de los

briozoos constituye un indicador de estabilidad ambiental partiendo de la

idea de que la selección matural actúa a nivel del zoario como un todo y

no de los zooides, ¡produciendo individuos diferentes para funciones dife-

rentes como una ventaja adaptativa. Para explicar y predecir esto se basa

en un modelo del desarrollo del polimorfismo, que a su vez se fundamenta

en otro para predecir las castas de insectos sociales (Wilson, 1968). En resu-

men, el modelo de Schopf señala: a.— una colonia tiende a formar un poli-

morfo para cada tarea; b.—el medio actúa haciendo variar los tipos de poli:

morfos y la estabilidad de las presiones de selección lleva a la formación de

los polimorfos y a su especialización, y c.— cuanto mayor es la estabilidad de

las fuerzas de selección mayor es el número de especies con polimorfos, mayor

el número de diversos polimorfos por especie y más especializados éstos. Y

para fundamentar este modelo analizó briozoos del Artico Canadiense y del

Atlántico Tropical, llegando a encontrar diferencias significativas traducidas

en un mayor polimorfismo de las especies tropicales, confirmando así el mo-

delo propuesto.

Como existe bastante información sobre la fauma briozoológica del

Antártico y también del Indopacífico, se quizo extender el mismo tipo de

estudio a estas faunas comparándolas también con las del Artico. De esta

manera se tiene entonces una comparación del poliformismo de las faunas

briozoológicas de ambos polos con las del Indopacífico, considerado por los

autores como la región de mayor diversidad específica (Ekman, 1953:16).

naa

Los resultados indican —siempre y cuando la teoría sea correcta— que el

polimorfismo de los briozoos antárticos es mucho mayor que el de los del

Artico, acercándose al de los briozoos del Pacífico Tropical, lo que se debería

a la gran estabilidad que ha existido por dentro de la convergencia antártica.

MATERIALES Y METODOS

Se estudiaron más de 800 especies de Bryozoa Cheilostomata, de las que

794 fueron obtenidas de la bibliografía que se señala más abajo y 77 de

colecciones en poder del autor provenientes de la Bahía de Concepción

(Chile Central) y de Bahía Chile (Isla Greenwich, Antártica) (Fig. 1). Para

los Bryozoa del Artico se consultó a Kluge (1962). Las especies consideradas

que ascienden a 200 son las que ese autor indicó como existentes y com-

probadas por él en los siguientes mares más al norte del círculo polar ártico:

Mar de Barents, desde el extremo norte de Noruega hasta Nueva Zembla,

Mar de Kara, Mar de Laptiev, Mar de Siberia Oriental y Mar de Chukotsk,

La fauna indopacífica de Bryozoa se obtuvo del análisis hecho por Harmer

de las colecciones obtenidas por el Simoca en las Indias Neerlandesas. Estos

comprendieron los Cheilostomata Anasca (1926), Cheilostomata Reteporidae

(1934) y Cheilostomata Ascophora (1957). Todas las especies consideradas se

encuentran en una faja que se extiende aproximadamente 10% al norte y

sur del Ecuador desde Nueva Guinea a Sumatra, y su número asciende

a 437,

De la fauna briozoológica del Pacífico Oriental se añaden 40 especies

provenientes de las Islas Galápagos, que fueron estudiadas por Camu y

Bassler en 1930.

Las especies del Antártico son aquellas que se han encontrado por den-

tro de la convergencia antártica, aunque también pueden hallarse en toda

el área subantártica. Los autores consultados fueron: Waters (1904); Calvet

(1909); Kluge (1914); Thornely (1924); Livingstone (1928); Hasenbank (1932);

Hastings (1943); Rogick (1955-1965); Moyano (1965-1974) y Androsova (1972-

1973). El total de especies alcanzó a 194, habiéndose incluido también aquéllas

que llegan sólo hasta South Georgia.

Con el objeto de contrastar dos áreas que nos parecen opuestas en cuanto

a estabilidad, se ha incluido 18 especies de Cheilostomata de la Bahía de

Concepción (36%40'S; 73%10"W) y 61 de Bahía Chile (62%30'S; 59%41'"W).

Ambas bahías son más o menos de las mismas dimensiones, pero muy dife-

rentes en cuanto a estabilidad ambiental. En la Bahía de Concepción desem-

boca un río (Andalién), varios arroyos, los que significan un gran aporte

de agua dulce, y la presencia de varias ciudades y puertos implican la eva-

cuación de aguas servidas e industriales, mientras que en Bahía Chile los

aportes de agua dulce son los deshielos del verano y casi no existe influencia

humana.

El polimorfismo que se tomó en cuenta se refiere a los heterozooides

—avicularias y vibracularias— tipos de individuos en los que el opérculo

zoecial está especialmente transformado. No se tomó en cuenta los queno-

zooides por no existir informaciones claras para muchas de las especies no

vistas por el autor personalmente. Y por las mismas razones tampoco fueron

considerados los gonozooides ni los quenozooides ovicelares.

Fig. 1.— Areas geográficas de las faunas briozoológicas estudiadas.

1.— Artico

2.— Indopacífico

3.— Antártico

4.— Galápagos

5.— Bahía de Concepción (Chile Central)

6.— Bahía Chile (Isla Greenwich, South Shetlands)

Se ha considerado como especies sin polimorfismo a aquellas que carezcan

de avicularias o vibracularias. Cuando más adelante se indica especies con

una, dos O tres avicularias se está significando uno o más tipos diferentes

de avicularias y no el número de ellas por zooide o por colonia. Se ha

considerado que una especie presenta dos o más avicularias cuando éstas

varían en forma, tamaño y función para la que están adaptadas. Así por

ejemplo si una especie presenta dos avicularias iguales, una a cada lado de

la abertura, se computa como existiendo un solo tipo; si otra especie tiene

una suboral y dos laterales entonces se computan dos tipos diferentes, y si

otra especie además de éstas tiene varias más semejantes entre sí en otras

partes del zooide o entre medio de los zooides, entonces se adjudican tres

tipos diferentes.

Las vibracularias, aunque por cierto constituyen un tipo de polimortos,

se han contabilizado aparte, no considerándose como tales a aquellas avi-

cularias de mandíbulas largamente setiformes como las de Crepidachantha

por ejemplo (Fig. 2).

En cada una de las áreas estudiadas se ha tomado en cuenta todas las

especies sean éstas de la zona de las mareas, de la plataforma continental,

como aquéllas que están bajo los 200 m de profundidad.

RESULTADOS

El cuadro NO 1 resume las características del polimorfismo de las diversas

faunas estudiadas, cada una de las cuales se analizará primeramente por

separado.

BRYOZOA DEL ARTICO: Extensamente estudiados por Kluge y otros

autores, los briozoos árticos tomados en cuenta son aquellos que están pre-

sentes por sobre Eurasia. De 200 especies 57 carecen de avicularias o vibra-

cularias lo que alcanza casi a un 309%. De las 143 que poseen una o más avi-

cularias y/o vibracularias, 31 tienen más de dos, 4 más de tres y sólo una

tiene vibracularias. Las especies con más de un polimorfo pertenecen a los

géneros Tegella, Notoplites, Tricellaria, Scrupocellaria, Smittina, Rhamphos-

tomella y Cellepora sensu lato. Con 3 o más las especies de Retepora y con

vibracularias sólo Caberea.

BRYOZOA DEL INDOPACIFICO: Los Cheilostomata del Indopacífico

que Harmer describió en los monumentales resultados de las colecciones del

SIBOGA alcanzan a más de 400, más que duplicando a los señalados por Kluge

para el Artico. Sólo 66 de éstos —un 15%-— carecen de avicularias y/o vibra-

cularias. De las 371 especies con polimorfos, 109 tienen dos o más 37 tres o

más y 16 desarrollan vibracularias. Se aprecia entonces una notable diferencia

ee, 00

Fig. 2.— Diversos tipos de polimorfos y maneras de evaluarlos.

A.— Autozooide sin polimorfos.

B.— Autozooide con un sólo tipo de polimorfo, una avicularia sub-

oral en este caso.

C.— Autozooide con dos tipos de polimorfos, una avicularia suboral

y otra frontal gigante. Se consideran como dos tipos distintos

porque la avicularia suboral protege la entrada del saco de com-

pensación y la frontal la pared externa del zooide.

con la briozoofauna del Artico. Las especies sin polimorfos bajan de un 28

a un 15% y las con dos o más suben de 15 a un 25%, en tanto que las que

tienen 3 0 más y vibracularias suben de 2 y 0,5% a 8,46 y 3,66%, respectiva-

mente. Comparados estos valores con los que Schopf (1973) señala para el

Atlántico Tropical Occidental que ascienden a 77,3% de especies con uno

o más polimorfos, 24,9% con dos o más y 8,49% con tres o más, se aprecia

claramente que el número de especies con uno o más polimorfos es superior

en más de un 7% en el Indopacífico. Por otra parte es sorprendente la simi-

litud de porcentajes entre especies con dos o más y con tres o más polimorfos.

Las especies con dos o más polimorfos corresponden a los géneros Celle-

poraria, Hippopetraliella, Sinupetraliella, Mucropetraliella, Adeona y géneros

afines, Spiroporina, Sclerodomus, Siphonicytara, Celleporina, Smittina, Cleido-

chasma, Rhynchozoon, Notoplites, Caberea, Scrupocellaria, etc., y aquéllas con

3 o más polimorfos a los géneros Adeonella, lodictyum, Sertella, Reteporella

y Triphyllozoon.

D.— Cuatro autozooides con polimorfos epizoeciales e interzoeciales.

En este caso existen tres tipos de polimorfos; una avicularia

suboral de posición variable en cada zooide; varias avicularias

frontales de ubicación y número no constante y el tercer tipo

está representado por las avicularias interzoeciales que reem-

plazan a un zooide en una corrida zoecial.

E.— En el lado distal de este autozooide existe una avicularia pedun-

culada a cada lado, cuya función es exactamente igual por lo

que en este caso se considera que aquí existe un solo tipo de

polimorfo.

F.— Detrás de cada zooide existe una vibracularia, tipo de polimorfo

cuyo opérculo se ha transformado en una larga seta capaz de

oscilar y girar sobre sí. Existe entonces en esta especie un solo

tipo de polimorfo.

ABREVIATURAS: Avi avicularia interzoecial; Avf avicularia frontal;

Avp avicularia pedunculada; Avs avicularia suboral; Op opérculo

zoecial; Vi vibracularias.

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E PE

BRYOZOA DE LAS GALAPAGOS: La colección que en 1930 estudiaron

Canu y Bassler era bastante exigua, alcanzando sólo a 40 el número de es-

pecies de Cheilostomata, de las que 6 carecen de polimorfos contra 34 que

asi

A e

exactamente equivalentes a los del Indopacífico. Claro está que la confiabi-

los poseen. Curiosamente estos números representan un 15

2 veces

a muestra 1

úmeros es inferior por corresponder a un

lidad de estos n

menor.

Zi:

CUADRO N2

PORCENTAJES DE POLIMORFISMO DE BRYOZOA CHEILOSTOMATA TROPICALES Y POLARES

—)

VIBRACULARIAS

PORCENTAJES ¡SIN POLMORFISMO

TRES O MAS

UNA O MAS DOS O MAS

INDOPACIFICO GALAPAGOS ANTARTICO

ARTICO

Med

BRYOZOA DEL ANTARTICO: Se tomaron en cuenta varios autores

para analizar los Bryozoa Cheilostomata de este sector, por no existir revi-

siones recientes completas de su fauna briozoológica como acontece con las

otras regiones consideradas. Como recientemente se ha añadido nuevas espe-

cies (Androsova, 1972; Moyano 1974) es de prever que el número de especies

descritas seguirá aumentando por existir aún muchas colecciones no estudiadas.

Con 194 especies casi iguala al Artico, de las que 37 carecen de polimorfos

haciendo un 19,07%, contra un 28,5% del ártico. Aquellas especies con dos

o más y tres o más polimorfos alcanzan al 23,71%, y 7,72%, respectivamente

acercándose notablemente a lo que acontece con la briozoofauna del Indo-

pacífico y diferenciándose claramente del Artico, lo que vendría a significar

que en términos de estabilidad ambiental es mayor la que reina por dentro

de la convergencia antártica que aquélla que existe por arriba del círculo

polar ártico. Por otra parte es significativamente importante la biomasa de

los briozoos antárticos, que en el área del Mar de Ross sobrepasa el 30% al

igual que los Porifera, valores que no se ven en el Artico (Hedgpeth 1969).

Las especies con dos o más polimorfos pertenecen a los géneros Arachno-

pusia, Cellarinella, Notoplites, Amastigia, Orthoporidra, Osthimosia, etc. y

aquéllas con tres o más a los géneros Camptoplites y Retepora sensu lato.

En esta briozoofauna los géneros Cellarinella y Camptoplites cuentan con

más de 10 especies cada uno, y la familia Cellariidae presente con 7 géneros

de los cinco son endémicos antárticos: Mawsonia, Paramawsonia, Cellariae-

forma, Paracellaria y Larvapora.

El Cuadro N9 2 compara porcentajes de polimorfismo entre las faunas

polares y tropicales.

BRYOZOA DE LAS BAHIAS CONCEPCION Y CHILE: La Bahía de Con-

cepción con un puerto y tres ciudades, la desembocadura de un río y varios

arroyos puede ser considerada no como un sistema estable por los aportes

de agua dulce y los desechos de las ciudades e industrias. Existen aquí unas

22 especies de Bryozoa de las que 18 son del orden Cheilostomata. De éstos

10 (55,559) carecen de polimorfismo y 8 (44,45%) poseen uno o más poli-

morfos. Si el razonamiento que se está empleando es válido, el bajo polimor-

fismo de esta fauna indicaría inestabilidad ambiental. Sin embargo es preciso

aclarar que es altamente probable que las 18 especies consideradas no re-

presenten la totalidad de las existentes en la Bahía, por lo que las conclu-

siones a que den origen, tengan un valor relativamente bajo.

En el sentido opuesto a esta bahía se halla la Bahía Chile cuya área

sumada a la del Estrecho Inglés que enfrenta, equivale más o menos ala

de la primera. Las profundidades de ambas varían sí, enormemente

llegando a más de 400 m en el Estrecho Inglés contra menos de 50 en la

PO OR

CUADRO N? 3.

POLIMORFISMO DE BRYOZOA CHEILOSTOMATA BAHIAS DE CONCEPCION Y CHILE

AVWVICULARIAS

PORCENTAJES [SIN POLIMORFISMO VIBRACULARIAS

UNA O MAS DOS O MAS TRES O MAS

FEF

EH + ++++

rr qr++

= E

loro 3320

50 PR Eta |

20 +++

Hr +++ rr...

lr +++ 2 2444++

Hr +rtrr+rr

BAHIA CONCEPCION BAHIA CHILE

Bahía de Concepción. El número de Bryozoa Cheilostomata conocidos de

Bahía Chile llega a los 61, de los que sólo 10 (16,39%,) carece de polimorfos

presentando por otra parte un 26,26% y un 11,4% de especies con dos o

más y tres o más polimorfos respectivamente. Estos valores se acercan mucho

más a los del Indopacífico que los de toda la briozoofauna antártica tomada

como conjunto. Estos valores más la exuberancia de las colonias indicarían

según el modelo que aquí se utiliza que la Bahía tiene una gran estabilidad,

lo que es confirmado por la escasa variación de la temperatura que en verano

sobrepasa apenas los 0%C permaneciendo a 50 m de profundidad en —1%C

aproximadamente, por el escaso aporte de agua dulce por fusión de hielos en

verano y por supuesto por la ausencia de actividad humana significativa.

Al igual que el Cuadro NO 2, el Cuadro NO 3 compara diversos porcen-

tajes de polimorfismo, que en este caso corresponden a los de la briozoofauna

de las Bahías de Concepción y Chile.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Los valores presentados tienen en común el haber usado el mismo criterio

en la valorización de los tipos de polimorfos para las faunas polares y tropi-

cales, pudiendo entonces compararlas entre sí. Se quizo incluir también la

fauna del Artico a pesar de haberse publicado datos previos por Schopf (1973)

para el Artico de Norteamérica, por no tener la certeza de la exacta valora-

ción que hizo ese autor de la cantidad de polimorfos, y porque el número

de especies consideradas fue sólo de 120 contra las 200 que incluye Kluge (1962).

Por otra parte en estos valores no se ha incluido en general a las sub-

especies porque podrían inducir a errores aumentando indebidamente el nú-

mero de los taxones con o sin polimorfos, porque en muchos casos podrían

corresponder a poblaciones remotas de una misma especie.

Estos valores son confiables, aunque no se presenten aquí argumentos

estadísticos por caer dentro de los rasgos ya señalados por Schopf (1973:253)

en los que incluye las justificaciones estadísticas correspondientes.

De los datos antes presentados se puede concluir que:

1.— El polimorfismo como la cualidad de desarrollar más de un tipo de

individuos en las especies coloniales para servir a funciones diferentes, es

mayor en los Bryozoa Cheilostomata tropicales (Indopacífico y Galápagos)

que en los polares.

2.— Los Cheilostomata antárticos muestran mayor polimorfismo que los

del Artico, acercándose a los valores del Indopacífico y Galápagos.

3.— Los de Bahía Chile (Antártica) presentan un alto índice de poli-

morfismo contra los de Bahía de Concepción que muestra el más bajo de todos

los estudiados, representando respectivamente un área muy estable comparada

con otra muy inestable.

4.— Tomando en cuenta estas conclusiones y los valores numéricos seña-

lados más arriba se deduce que el alto índice de polimorfismo de los briozoos

antárticos se debe a la estabilidad de las presiones de selección que actúan

a nivel zoarial (colonial) favoreciendo la aparición de individuos diferentes

para actividades diferentes, como consecuencia de una estabilidad ambiental

grande por dentro de la convergencia antártica.

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SN y

APENDICE

LISTA DE LAS ESPECIES Y SU TIPO DE POLIMORFISMO.

Para cada una de las faunas consideradas en este trabajo se da la corres-

pondiente lista de especies dispuestas en orden alfabético de géneros y el

número y calidad de los polimorfos que presentan.

Cuando se señala: 1 av; 2 av significa respectivamente con una, dos y

tres o más diferentes tipos de avicularias. 1 v indica que existen vibracularias.

Un 0 señala que en la especie considerada no existen polimorfos y/o vibra-

cularias, no significando que pudieran existir otros tipos de polimorfos como

los kenozooides por ejemplo.

BRYOZOA CHEILOSTOMATA DEL ARTICO

Se ha incluido las especies que señala Kluge (1962), con excepción de

las subespecies salvo contados casos que a juicio del autor merecen ser in-

cluidas.

1.— Amphiblestrum fleming: (Busk) = l av

2.— Amphiblestrum septentrionalis (Kluge) = lav

3.— Amphiblestrum trifolium (S. Wood) = l av

4.— Bicellarina alderi (Busk) = l av

5.— Bugula elongata Nordgaard = lav

6.— Bugula fastigiata Dalyell = lav

7.— Bugula harmsworthi Waters = l av

8.— Bugula tricuspis Kluge = l av

9.— Bugula tschukotkensis Kluge = lav

10.— Bugulopsis peachi (Busk) = 0

11.— Bugulopsis peachi var. beringia Kluge =0

12.— Caberea ellisi (Fleming) = 2 avilyv

13.— Callopora aurita (Hincks) = lav

14.— Callopora craticula (Alder) = lav

15.— Callopora derjugin: (Kluge) = 0

16.— Callopora

17.— Callopora

18.— Callopora

19.— Callopora

20.— Callopora

lata (Kluge)

lineata (Linnaeus)

obesa Kluge

smitti Kluge

whiteavesí Norman

21.— Cauloramphus cymbaeformis

22.— Cauloramphus intermedius Kluge

23.— Cauloramphus spiniferum (Johnston)

24.— Cellepora

25.— Cellepora

26.— Cellepora

27.— Cellepora

28.— Cellepora

29.— Cellepora

30.— Cellepora

31.— Cellepora

avicularis Hincks

canaliculata Busk

nodulosa Lorenz

nordenskjoldi Kluge

pumicosa Linnaeus

smitti Kluge

sulcularis (Packard)

ventricosa Lorenz

32.— Cheilopora inermis (Busk)

33.— Cheilopora sincera (Smitt)

34.— Corynoporella tenuis Hincks

35.— Cribilina

36.— Cribilina

37.— Cribilina

38.— Cribilina

39.— Cribilina

40.— Cribilina

annulata (Fabricius)

cryptoecium Norman

punctata (Hassall)

spiculifera Kluge

spitzbergensis Norman

waters: Andersson

41.— Cylindroporella tubulosa (Norman)

42.— Dendrobeania flustroides (Levinsen)

435.—D. fruticosa (Packard)

44.— D. levinseni (Kluge)

45.— D. murmanica (Kluge)

46.— D. murrayana (Johnston)

47 — Dendrobeania pseudolevinsen: Kluge

48.— Dendrobeania pseudomurrayana Kluge

49.— Doryporella spathulifera (Smitt)

50.— Electra catenularia (Jamesson)

51.— Electra crustulenta Borg

52.— Electra pilosa (Linnaeus)

53.— Escharella abyssicola (Norman)

54.— Escharella dijmphanae (Kluge)

55.— Escharella immersa (Fleming)

56.— Escharella indivisa Levinsen

o .o.o oo2o0£MN eme. e 21ÁA -O POr». o” OoNNnNNnN-NRe--nN---.oNnoRrño

57.— Escharella laqueata (Norman)

58.— Escharella macrodonta Levinsen

59.— Escharella microstoma (Norman)

60.— Escharella octodentata (Hincks)

61.— Escharella ventricosa (Hassall)

62.— Escharelloides cancellatum (Smitt).

63.— Escharelloides simplex (Kluge)

64.— Escharelloides spinulifera (Hincks)

65.— Escharelloides stenostoma (Smitt)

66.— Escharoides bidenkapi (Kluge)

67.— Escharoides jackson: (Waters)

68.— Escharoides monstrosa Kluge

69.— Escharopsis rosacea (Busk)

70.— Escharopsis sarsi (Smitt)

71.— Eucratea loricata (Linnaeus)

72.— Flustra carbasea (Ellis y Solander)

73.—Flustra barlei Busk

74.— Flustra foliacea (Linnaeus)

75.— Flustra membranaceotruncata Smitt

76.— Flustra nordenskjoldi Kluge

77.—Flustra securifrons (Pallas)

78.— Flustra serrulata Busk

79.— Harmeria scutulata (Busk)

80.— Hemicyclopora emucronata (Smitt)

81.— Hippodiplosia borealis (Waters)

82.— Hippodiplosia harmsworthi (Waters)

83.— Hippodiplosia murdochi Kluge

84.— Hippodiplosia obesa (Waters)

85.— Hippodiplosia propinqua (Smitt)

86.— Hippodiplosia reticulopunctata (Hincks)

87.— Hippodiplosia tchukotkensis Kluge

88.— Hippodiplosia ussowi (Kluge)

89.— Hippoponella fastigatoavicularis (Kluge)

90.— Hippoponella hippopus (Smitt)

91.— Hippothoa hyalina (Linnaeus)

92.— Hippothoa divaricata v. arctica Kluge

93.— Hippothoa expansa Dawson

94.— Kinetoskias arborescens Danielssen

95.— Kinetoskias smitti Danielsen

96.— Larnacius corniger (Busk)

97.— Leieschara coarctata Sars

Ma MEMES

hn -=- NOOO »-aN + 2 - -O0O0O0n»-O0or*a-O00m-. 0-4 -.O0ooooooo o

98.— Leteschara orientalis (Kluge)

99.— Leteschara subgracilis (d'Orbigny)

100.— Lepraliella contigua (Smitt)

101.— Lepralioides nordlandica (Nordgaard)

102.— Megapora ringens (Busk)

103.— Membranipora membranacea (Linnaeus)

104.— Microporina articulata (Fabricius)

105.— Microporella ciliata (Pallas)

106.— Microporella ¿impressa (Audouin)

107.— Microporella malussíi (Audouin)

108.— Notoplites jeffreysiz (Norman)

109.— Notoplites normani (Nordgaard)

110.— Notoplites sibirica (Kluge)

111.— Votoplites smitti: (Norman)

112.— Palmicellaria skenei (Ellis y Sol)

113.— Phylactella labiata (Boeck)

114.— Porella acutirostris Smitt

115.— Porella aperta (Boeck)

116.— Porella compressa (Sowerby)

117.— Porella fragilis Levinsen

118.— Porella groenlandica Norman

119.— Porella laevis (Fleming)

120.— Porella plana Hincks

121.— Porella princeps Norman

122.— Porella proboscidea Hincks

123.— Porella saccata (Busk)

124.— Porella smitti Kluge

125.— Porella struma (Norman)

126.— Pseudoflustra anderssoni Kluge

127.— Pseudoflustra birula: Kluge

128.— Pseudoflustra hincksi Kluge

129.— Pseudoflustra sinuosa (Andersson)

130.— Pseudoflustra solida (Stimpson)

131.— Retepora beaniana King

132.— Retepora celulosa (Linnaeus)

133.— Retepora elongata Smitt

134.— Reussina impressa (Reuss)

135.— Rhamphonotus gorbunov: Kluge

136.— Rhamphonotus minax (Busk)

137.— Rhamphostomella bilaminata (Hincks)

138.— Rhamphostomella costata Lorenz

Pe? MA

Il Il Il

N o == O 09 09 09 bulo fado palo pd do do lo lo lo o o o NY Ao fo PO NN NON NOOO - O DO AH

139.— Rhamphostomella

140.— Rhamphostomella

141.— Rhamphostomella

142.— Rhamphostomella

143.— Rhamphostomella

144.— Rhamphostomella

hincksi Nordgaard

ovata (Smitt)

plicata (Smitt)

riatula (Hincks)

scabra (Fabricius)

spinigera Lorenz

145.— Sarsiflustra abyssicola (Sars)

146.— Schizoporella alder: (Busk)

147.— Schizoporella biaperia (Michelin)

148.— Schizoporella bispinosa Nordgaard

149.— Schizoporella costata Kluge

150.— Schizoporella crustacea (Smitt)

151.— Schizoporella elmwoodiae Waters

152.— Schizoporella hexagona Nordgaard

153.— Schizoporella incerta Kluge

154.— Schizoporella limbata Lorenz

155.— Schizoporella magniporata Nordgaard

156.— Schizoporella ortman: Kluge

157.— Schizoporella pachystega Kluge

158.— Schizoporella porifera (Smitt)

159.— Schizoporella smitti Kluge

160.— Schizoporella stylifera (Levinsen)

161.— Schizoporella thompsoni: Kluge

162.— Scrupocellaria arctica (Busk)

163.— Scrupocellaria minor Kluge

164.— Scrupocellaria scabra (Van Beneden)

165.— Semibugula birulai Kluge

166.— Smittina concinna Busk

167.— Smittina glaciata (Waters)

168.— Smittina jeffreysi Norman

169.— Smittina majuscula (Smitt)

170.— Smittina minuscula (Smitt)

171.— Smittina mucronata (Smitt)

172.— Smittina muliebris Kluge

173.— Smittina peristomata (Nordgaard)

174.— Smittina pseudoacutirostris Gostilowskaja

175.— Smittina smitti (Kirchenpauer)

176.— Smittina trispinosa (Johnston)

177.— Smittina tuberosa

Kluge

178.— Smittipora solida (Nordgaard)

179.— Stomachetosella collaris (Kluge)

O Rh a. - == N -=-N a += += N == == 09 =ANOOGO +». O0O0O0O0O00 2 a == a A a A = NN py

180.— Stomachetosella cruenta (Busk)

181.— Stomachetosella producta (Packard)

182.— Stomachetosella sinuosa (Busk)

183.— Tegella amissavicularis (Kluge)

184.— Tegella anguloavicularis Kluge

185.— Tegella arctica (d'Orbigny)

186.— Tegella armifera (Hincks)

187.— Tegella armiferoides Kluge

188.— Tegella inermis Kluge

189.— Tegella kildinensis Kluge

190.— Tegella nigrans Hincks

Il IAE ME

= 2D =—- NN NNNOoNnNNnNnN--oOocoo

191.— Tegella nordvegica (Nordgaard)

192.— Tegella spitzbergensis (Bidenkap)

193.— Tegella unicornis (Fleming)

194.— Tricellaria gracilis (Van Beneden)

195.— Tricellaria ternata (Ellis y Solander)

196.— Tessaradoma gracile (Sars)

197.— Umbonula arctica (Sars)

198.— Umbonula inarmata Kluge

199.— Umbonula patens (Smitt)

200.— Uschakovia gorbunovi Kluge

BRYOZOA DEL INDOPACIFICO

Se incluyen los Cheilostomata tratados por Harmer de las colecciones

hechas por el Siboga y publicados en los años 1926, 1934 y 1957.

1.— Acanthodesta arctata Harmer = lav

2.— Acanthodesia limosa (Waters) "Y

3.— Acanthodesia nelliiformis Harmer = lav

4.— Acanthodesia savartii (Audouin) 00

5.— Acanthodesia simplex (Busk) 0

6.— Actisecos pulcher Harmer = 0

7.— Actisecos regularis Canu y Bassler ="0

8.— Adeona foliacea Lamouroux = 2 av

9.— Adeona articulata Canu y Bassler = 2 av

10.— Adeonella extensa Harmer = 3 av

11.— Adeonella intricaria Busk = 3 av

12.— Adeonella 'platalea Busk = 3 av

13.— Adeonellopsis arculifera (Canu y Bassler) = 2 av

14.— Adeonellopsis yarraensis (Waters) = 2 av

15.— Aetea anguina (Linnaeus)

16.— Aetea truncata (Landsb.)

17.— Agalmatozoum decussis (Canu y Bassler)

18.— Allantopora translucens Harmer

19.— Amastigia rudis (Busk)

20.— Anoteropora magnicapitata C. y B.

21.— Antropora granulifera (Hincks)

22.— Antropora marginella (Hincks)

23.— Arachnopusia laticella (C. y B.)

24.— Arachnopusia spathulata (C. y B.)

25.— Arthropoma cecilii (Audouin)

26.— Arthropoma circinatum (McGillivray)

27.— Arthropoma punctigerum (McGillivray)

28.— Aspidostoma cylindricum Harmer

29.— Atelestozoum obliquum Harmer

30.— Beania

31.— Beanta

32.— Beania

33.— Beania

34.— Beanta

35.— Beantia

36.— Beania

37.— Beania

asymmetrica Harmer

cupulariensis Osburn

discodermiae (Ortman)

hirtissima y. cylindrica Hincks

magellanica (Busk)

mirabilis Johnston

petiolata Harmer

regularis Thornely

38.— Bicellariella levinseni Harmer

39.— Bifaxaria

bilabiata Harmer

40.— Bifaxaria gemella Harmer

41.— Bifaxaria

42. — Bifaxaria

laevis Busk

longicaulis Harmer

43.— Bifaxaria submucronata Busk

44.— Brettia

mollis Harmer

45.— Buchneria sinuata Harmer

46.— Bugula

47.— Bugula

48.— Bugula

49.— Bugula

50.— Bugula

51.— Bugula

52.— Bugula

53.— Bugula

54.— Bugula

55.— Bugula

cucullata Busk

dentata (Lamoroux)

dispar Harmer

johnstonae (Gray)

longicauda Harmer

mollis Harmer

pedata Harmer

philippsae Harmer

robusta McGillivray

scaphoides Kirkpatrick

e ÓN

+. ha o o mi SO O NN NO a A pl A o o 2 O) A O) A A A O) A Af A A A NN Nono Oo

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WAY

56.— Bugula subglobosa Harmer

57.— Bugula vectifera Harmer

58.— Caberea boryi Audouin

59.— Caberea lata Busk

60.— Caberea transuersa Harmer

61.— Caleschaara levinseni Harmer

62.— Calloporina canaliculata (McGillivray)

63.— Calloporina sculpta Camu y Bassler

64.— Calloporina sigillata Canu y Bassler

65.— Calpensia pulchra Harmer

66.— Calpensta reversa Harmer

67.— Calyptotheca capitifera (Canu y Bassler)

68.— Calyptotheca circularis Harmer

69.— Calyptotheca fossulata Harmer

70.— Calyptotheca hastingsae Harmer

71.— Calyptotheca inaequalis Harmer

72.— Calyptotheca orbiculata Harmer

73.— Calyptotheca parcimunita Harmer

74.— Calyptotheca suluensis Harmer

75.— Calyptotheca tenuata Harmer

76.— Calyptotheca wasinensis (Waters)

77.—Calyptozoum campanulatum (Harmer)

78.— Calyptozoum operculatum Harmer

79.— Camptoplites lunatus Harmer

80.— Canda clypeata (Haswell)

81.— Canda foliifera Harmer

82.— Canda pecten Thornely

83.— Carbasea linguiformis Harmer

84.— Catadysis cribritheca Harmer

85.— Caulibugula dendrograpta (Waters)

86.— Caulibugula exilis (McGillivray)

87.— Caulibugula inermis Harmer

88.— Caulibugula mortensent (Marcus)

89.— Caulibugula separata Harmer

90.— Caulibugula zanzibariensis (Waters)

91.— Cellaria anceps Harmer

92.— Cellaria praelonga Harmer

93.— Cellaria punctata (Busk)

94.— Cellaria tecta Harmer

95.— Celleporaria aperta (Hincks)

96.— Celleporaria columnaris (Busk)

ROO a a o a e a a A A RO A A A A A NA O A NANA ASAS UN INIA

av;

Viv

97.— Celleporaria decostilsii (Audouin)

98.— Celleporaria: fusca (Busk)

99.— Celleporaria granulosa (Haswell)

100.— Celleporaria indiscreta Harmer

101.— Celleporaria labelligera Harmer

102.— Celleporaria oculata (Lamarck)

105.— Celleporaria pilaefera (C. y B.)

104.— Celleporaria pigmentaria (Waters)

105.— Celleporaria tridenticulata (Busk)

106.— Celleporaria vagans (Busk)

107.— Celleporaria vallifera Harmer

108.— Celleporina costazii (Audouin)

109.— Celleporina exisa Harmer

110.— Celleporina geminata (Ortmann)

111.— Celleporina porosissima Harmer

112.— Celleporina radiata (Ortmann)

113.— Celleporina rostellata Harmer

114.— Chaperia acanthina (Lamouroux)

115.— Chaperia cervicornis (Busk)

116.— Characodoma bifurcatum (Waters)

117.— Characodoma latisinuatum Harmer

118.— Cheiloporina haddoni (Harmer)

119.— Cheiloporina malayana Harmer

120.— Chetloporina scopulifera Harmer

121.— Chlidonia pyriformis (Bert.)

122.— Chlidoniopsis inflata Harmer

123.— Chorizopora brogniartíi (Audouin)

124.— Chorizopora spinosa (Kirkpatrick)

125.— Cigclisula areola (Livingstone)

126.— Cigclisula occlusa (Busk)

127.— Cigclisula turrita (Smitt)

128.— Codonellina montferrand: (Audouin)

129.— Cleidochasma areolatum (C. € B.)

130.— Cleidochasma bassleri (Calvet)

131.— Cleidochasma biavicularium (C. k B.)

132.— Cleidochasma fallax (C. £ B.)

133.— Cleidochasma laterale Harmer

134.— Cleidochasma longitudinale Harmer

135.— Cleidochasma mirabile Harmer

136.— Cleidochasma peristomarium (C. € B.)

157.— Cleidochasma protrusum (Thornely)

MARA AE E AE EE EA EA RAE E MEA E AE E EA E IEA

RH -ANNNNR*?N"NOoON* + == OOO?» == =ONNnNnNnNnNnmNy.QNnNynN,nNn No NN

138.— Colletosia radiata (Moll)

159.— Conescharellina

140.— Conescharellina

141.— Conescharellina

142.— Conescharellina

143.— Conescharellina

144. — Conescharellina

145.— Conescharellina

146.— Conescharellina

angustata d'Orbigny

catella C. £ B.

crassa (Ten.-Woods)

distalis Harmer

elongata C. £ B.

jucunda C. € B.

ovalis Harmer

papulifera Harmer

147.— Conescharelina rectilinea Harmer

148.— Conescharellina symmetrica Harmer

149.— Conopeum ertophorum (Lamouroux)

150.— Conopeum reticulum (Linnaeus)

151.— Copidozoum sagittiferum Harmer

152.— Cornucopina bella (Busk)

1535.— Cornucopina conica Harmer

154.— Cornucopina geniculata Harmer

155.— Cornucopina moluccensis (Busk)

156.— Cornuticella cornuta (Busk)

157.— Cornuticella jugata Harmer

158.— Cornuticella perforata (Busk)

159.— Cornuticella taurina (Busk)

160.— Coscintopsis caerulea (C. y B.)

161.— Cosciniopsis declivis Harmer

162.— Cosciniopsis globosa Harmer

163.— Cosciniopsis lonchaea (Busk)

164.— Cosciniopsis onucha (Kirkpatrick)

165.— Crateropora expansa Harmer

166.— Crateropora falcata Levinsen

167.— Crateropora foraminata Harmer

168.— Crepidacantha crinispina C. y B.

169.— Crepidacantha poissoni (Audouin)

170.— Crepis decussata Harmer

171.— Crepis longipes Jullien

172.— Crepis verticillata Harmer

173.— Cupuladria guineensis (Busk)

174.— Cyttaridium pulcherrimum Harmer

175.— Dakarta subovoidea (D'Orbigny)

176.— Didymozoum marginatum Harmer

177.— Didymozoum triseriale (Phil.)

178.— Drepanopora corrugata (Thornely)

A E E SNA ES A E E

179.— Drepanopora inciser (Thornely)

180.— Drepanopora longiuscula Harmer

181.— Electra angulata Levinsen

182.— Ellisina curvirostris (Hincks)

183.— Emballotheca acutirostris Harmer

184.— Emballotheca pacifica Harmer

185.— Emballotheca quadrata (McGillivray)

186.— Escharina pesanseris (Smitt)

187.— Exechonella magna (McGillivray)

188.— Exechonella tuberculata (McGillivray)

189.— Euoplozoum cirratum (Busk)

190.— Farciminellum hexagonum (Busk)

191.— Fenestrulina malusii (Audouin)

192.— Fenestrulina mutabilis (Hastings)

193.— Figularia fissa (Hincks)

194.— Flabellopora elegans d'Orbigny

195.— Flabellopora irregularis C. £ B.

196.— Flabellopora umbonata (Haswell)

197.— Foveolaria retiformis Harmer

198.— Gemellipora eburnea Smitt

199.— Gigantopora mutabilis (C. £ B.)

200.— Gigantopora perelegans Harmer

201.— Gigantopora profunda Harmer

202.— Gigantopora pupa (Jullien)

203.— Gigantopora spiculifera C. £ B.

204.— Halysis diaphana (Busk)

205.— Hiantopora intermedia (Kirkpatrick)

206.— Himantozoum emaciatum Harmer

207.— Himantozoum taurinum Harmer

208.— Hippaliosina acutirostris C. £ B.

209.— Hippaliosina adherens (Thornely)

210.— Hippaliosina latisinuata Harmer

211.— Hippaliosina ovicellata Harmer

212.— Hippaliosina spathulifera Harmer

213.— Hippomenella spatulata Harmer

214.— Hippopetraliella crassocirca (C. € B.)

215.— Hippopetraliella dorsiporosa (Busk)

216.— Hippopetraliella magna (d'Orbigny)

217.— Hippopetrialiella serratilabrosa Harmer

218.— Hippoponella spatulata Harmer

219.— Hippopodina feegeensis (Busk)

EMMA A SA

= =NNR*?NR*?N == O Aa O "VO + =oOO >» NOR? + Qs

220.— Hippopodina pectoralis Harmer

221.— Hippoporella calyciformis (Philipps)

222.— Hippoporella

223.— Hippoporella spinigera (Philipps)

224.— Hippoporella tuberculata (Philipps)

225.— Hippothoa

226.— Inversiula

227.— Iodictyum

228.— lodictyum

229.— lodictyum

230.— lodictyum

231.— lodictyum

232.— lodictyum

233.— Todictyum

234.— Iodictyum

235.— Iodictyum

236.— Fodictyum

distans McGillivray

inversa (Waters)

axilare (Ortmann)

buchneri Harmer

cyclostoma Harmer

deliciossum Harmer

gibberosum (Buchner)

perarmatum Harmer

polycrenulatum (Okada)

projectum Harmer

spicatum Harmer

willeyi Harmer

237.— Kinetoskias elongata Harmer

238.— Labioporella bursaria (McGillivray)

239.— Labioporella cornuta Harmer

240.— Labioporella crenulata Levinsen

241.— Labioporella spatulata Harmer

242.— Labioporella thornelyae Harmer

243.— Lagentpora cylindrica Harmer

244. — Laminopora bimunita (Hincks)

245.— Laminopora contorta Michelin

246.— Lanceopora cylindrica (C. € B.)

247. — Lanceopora formosa Harmer

248.— Lanceopora quadlingi (Haswell)

249.— Lekythopora perplexa Harmer

250.— Lepralia biturrita Harmer

251.— Leuinsenella carinata Harmer

252.— Lagarozoum profundum Harmer

253.— Margaretta

254.— Margaretta

255.— Margaretta

256.— Margaretta

257.— Margaretta

258.— Margaretta

259.— Margaretta

260.— Margaretta

buski Harmer

cereoides (Ell. £ Sol.)

gracilior (Ortmann)

hirsuta (Lamoroux)

levinsent (C. £ B.)

opuntioides (Pallas)

tenuis Harmer

triplex Harmer

multidentata (Thornely)

oo oO 2nL.O QO0 2 Q í€ = HO 24<“¿N NO -—» >? O0O 2 .N € YN 09 »=— == - NN ON” + O

261.— Margaretta watersi (C. £ B.)

262.— Membraniporella aragoi (Audouin)

263.— Metroperiella pyriformis Harmer

264.— Microporella orientalis Harmer

265.— Microporella umbracula (Audouin)

266.— Microporella vibraculifera Hincks

267.— Monoporella nodulifera (Hincks)

268.— Mucropetraliella echinata (C. y B.)

269.— Mucropetraliella loculifera Harmer

270.— Mucropetraliella philippinensis (C. £ B.)

271.— Mucropetraliella robusta (C. £ B.)

272.— Mucropetraliella serrata (Livingstone)

273.— Mucropetraliella thenardi (Audouin)

274.— Mucropetraliella valdemunita Harmer

275.— Mucropetraliella verrucosa (C. £ B.)

276.— Mucropetraliella watersi Harmer

277.— Nellia oculata Busk

278.— Nellia tenuis Harmer

279.— Nichtina tuberculata (Bosc)

280.— Notoplites impar Harmer

281.— Notoplites obliquidens Harmer

282.— Notoplites rostratus Harmer

283.— Notoplites scutatus Harmer

284.— Onychocella angulosa (Reuss)

285.— Petralia ingens Harmer

286.— Petraliella bisinuata (Smitt)

287.— Petraliella chuakensis (Waters)

288.— Porella occulta Harmer

289.— Portcellaria ratoniensis (Waters)

290.— Pyrulella corbula (Hincks)

291.— Rhamphostomella argentea (Hincks)

292.— Rhynchozoon bifurcatum Harmer

293.— Rhynchozoon compactum (Thornely)

294.— Rhynchozoon detectum Harmer

295.— Rhynchozoon globosum Harmer

296.— Rhynchozoon incrasatum (Hincks)

297.— Rhynchozoon larreyi (Audouin)

298.— Rhynchozoon laterale Harmer

299.— Rhynchozoon triangulare Harmer

300.— Rhynchozoon tubulosum (Hincks)

301.— Reptadeonella flagellifera Harmer

—30—

A A A 0 E | A A A A A 1 A

+= NNNNNNNNN"F a. -N € € N 2 N 0 =NOB6+>0o0NygñyoNy”y0ÑNy 09700504 iO 540

302.— Reptadeonella joloensis (Bassler)

303.— Reptadeonella plagiopora (Busk)

304.— Reteporella graeffez (Kirchenpauer)

305.— Reteporella obtecta (Buchner)

306.— Reteporellina

307.— Reteporellina

308.— Reteporellina

309.— Reteporellina

capistrata Harmer

denticulata (Busk)

idmoneoides Harmer

laxipes (C. € B.)

310.— Retiflustra cornea (Busk)

311.— Retiflustra reticulum (Hincks)

312.— Retiflustra schonaui Levinsen

313.— Sauignyella lafontiz (Audouin)

314.— Savignyella otophora (Kirkpatrick)

315.— Schizmopora aculeata (C. € B.)

316.— Schizmopora redoutez (Audouin)

317.— Schizobrachiella convergens Hamer

318.— Schizobrachiella subhexagona (Ortmann)

319.— Schizomavella

320.— Schizomavella

321.— Schizomavella

322. — Schizomavella

australis (Haswell)

inclusa (Thornely)

sinapiformis Harmer

triquetra Harmer

323.— Sclerodomus corrugatus (Busk)

324.— Sclerodomus cylindraceus Harmer

325.— Sclerodomus giganteus Harmer

326.— Sclerodomus pauciporosus Harmer

327.— Sclerodomus rugatus Harmer

328.— Sclerodomus tenuis Harmer

329.— Serupocellaria

330.— Scrupocellaria

331.— Scrupocellaria

332.— Scrupocellaria

333.— Scrupocellaria

334.— Scrupocellaria

335.— Scrupocellaria

336.— Scrupocellaria

337.— Scrupocellaria

338.— Scrupocellaria

curvata Harmer

delilii (Audouin)

diadema Busk

ferox Busk

longispinosa Harmer

maderensis Busk

obtecta Haswell

securifera Busk

serrata Waters

spatulata (d'Orbigny)

339.— Sertella cyclostoma Harmer

340.— Sertella granulata (McGillivray)

341.— Sertella longifissa Harmer

342.— Sertella suluensis Harmer

—$1—

MM MM

vo N do 4 N =-NNNNNNNN-N-.»N-oN--NnyNOo*0N-=- == O0ONoNos0s<mh5N

Pl o lo lo plo plo pl

RA ES PI A

343.— Setosellina constricta Harmer

344.— Setosellina coronata (Hincks)

345.— Sinupetraliella affinis Harmer

346.— Sinupetraliella cylindrica Harmer

347.— Sinupetraliella gigantea (C. € B.)

348.— Sinupetraliella litoralis (Hastings)

349.— Smittina

350.— Smittina

351.— Smittina

352.— Smittina

353.— Smittina

354.— Smittina

355.— Smittina

356.— Smittina

357.— Smittina

358.— Smittina

359.— Smittina

360.— Smittina

361.— Smittina

362.— Smittina

363.— Smittina

364.— Smittina

365.— Smittina

366.— Smittina

367.— Smittina

acutodenta Harmer

dentigera Harmer

egyptiaca (Waters)

exclusa Harmer

fistulata Harmer

glomerata (Thornely)

levis (Kirkpatrick)

longiuscula Harmer

malleolus (Hincks)

marsuprum (McGillivray)

nasuta Harmer

papulata Harmer

persevaliz (Audouin)

protecta (Thornely)

raigi (Audouin)

signata (Waters)

subtubulata Harmer

tropica (Waters)

tubula (Kirkpatrick)

368.— Smittipora abyssicola (Smitt)

369.— Smittipora cordiformis Harmer

370.— Spiroporina brevitubulata Harmer

371.— Spiroporina longicollis (C. £ B.)

372.— Spiropoirna venusta Harmer

373.— Spiroporina vertebralis Stoliczka

374.— Steganoporella alveolata Harmer

375.— Steganoporella buskii Harmer

376.— Steganoporella dilatata Harmer

377.— Steganoporella haddoni Harmer

378.— Steganoporella

379.— Steganoporella magnilabris (Busk)

380.— Steganoporella

381.— Stephanosella bernardii (Audouin)

382.— Strongylopora benepennata Harmer

383.— Stylopoma duboisit (Audouin)

— 32 —

lateralis McGillivray

mandibulata Harmer

N »=4N A a 2 op == N N N 4 a == N = = N N 09 2 == = N == NN,yNNDNDN”NNNNm*-

< <

384.— Stylopoma parviporosum C. K£ B.

385.— Stylopoma viride (Thornely)

386.— Synnotum aegyptiacum (Audouin)

387.— Synnotum contortum Waters

388.— Synnotum pembaense Waters

389.— Siphonicytara cylindrica Harmer

390.— Siphonicytara formosa Harmer

391.— Syringotrema auriculatum Harmer

392.— Terminocella vittata Harmer

393.— Tessaradoma bipatens Harmer

394.— Teuchopora verrucosa (C. £ B.)

395.— Tetraplaria immaersa (Haswell)

396.— Tetraplaria ventricosa (Haswell)

397.— Thalamoporella expansa Levinsen

398.— Thalamoporella gothica (Busk)

399.— Thalamoporella granulata Levinsen

400.— Thalamoporella hamata Harmer

401.— Thalamoporella novaehollandiae (Haswell)

402.— Thalamoporella rozieri (Audouin)

403.— Thalamoporella stapifera Levinsen

404.— Thalamoporella tubifera Levinsen

405.— Thornelya ceylonica (Thornely)

406.— Thornelya perarmata Harmer

407.— Tremogasterina celleporoides (Busk)

408.— Tricellaria aquilina Harmer

409.— Tricellaria scalariformis Harmer

410.— Triphyllozoon

411.— Triphyllozoon

412.— Triphyllozoon

413.— Triphyllozoon

414.— Triphyllozoon

415.— Triphyllozoon

416.— Triphyllozoon

417.— Triphyllozoon

418.— Triphyllozoon

419.— Triphyllozoon

420.— Triphyllozoon

421.— Triphyllozoon

422.— Triphyllozoon

benemunitum Harmer

bimunitum (Ortmann)

hirsutum (Busk)

indivisum Harmer

inornatum Harmer

mucronatum (Busk)

patens Harmer

patulum Harmer

philippinense (Busk)

separatum Harmer

trifoliatum Harmer

tubulatum (Busk)

tuberculiferum Harmer

423.— Trochosodon linearis Canu y Bassler

424.— Trochosodon optatus Harmer

— 33

MAME AMA AAN

Him 00 09 09 09 09 N 09 09 09 Y 00 0 0. ONN nn 000 ---nNNnowmnNnN vw

425.— Trochosodon radiatus (C. y B.) = lav

426.— Tropidozoum cellariiforme Harmer =0

427.— Trypostega venusta (Norman) = l av (vestigial)

428.— Urceolipora pocillifera Harmer = l av

429.— Urceolipora sinuata Harmer = lav

430.— Vittaticella cylindriformis Harmer =.1.av

431.— Vittaticella gibbosa (Busk) = lav

432.— Vittaticella imperfecta Harmer "Lan

433.— Vittaticella longicaudata Harmer = l av

434.— Vittaticella perlucens Harmer = lav

435.— Vittaticella tenella Harmer = lav

436.— Vittaticella trrangulifera Harmer = lav

437.— Vittaticella tuberculifera Harmer = lav

458.— Vittaticella uberrima Harmer = lav

439.— Zeuglopora arctata Harmer = 2 0Y

Las especies: Beania magellanica (Busk) y Margaretta hirsuta (Lamouroux)

no se tomaron en cuenta para el cálculo del porcentaje de especies con poli-

morfismo por no ser del área indopacífica.

BRYOZOA DE LAS ISLAS GALAPAGOS

La lista aquí incluida recoge los nombres específicos tal como los usaron

Canu y Bassler (1930). En la imposibilidad de verificar para todos su posición

genérica actual se ha preferido dejarlos sin corregir.

1.— Aplousina filum Jullien =0

2.— Adeona tubulifera Canu y Bassler = l av

3.— Arthropoma cecili Savigny-Audouin =,0

4.— Callo pora curvirostris Hincks = lav

5.— Callopora tenuirostris Canu y Bassler dejar

6.— Callopora verrucosa Canu y Bassler SL Jay

7.— Cauloramphus brunea Canu y Bassler =:1. ay

8.— Chaperia condilata Canu y Bassler Salay

9.— Chorizopora brongniarti Audouin a

10.— Crepidacantha poissoni Savigny-Audouin a

11.— Cupuladria umbellata Lamouroux = lav

12.— Codonella granulata Canu y Bassler =.1.av

13.— Dakaria sertata Canu y Bassler =0

14.— Diplonotos costulatum Canu y Bassler = lav

15.— Diplonotos striatum Canu y Bassler = lay

16.— Enantiosula manica Canu y Bassler =

17.— Hippomenella parvicapitata C. y B. =

18.— Hippoporidra granulosa C. y B. =

19.— Hippoporina cleidostoma Smitt =

20.— Hippotrema spiculifera C. y B. =

21.— Holoporella hexagonalis C. y B. =

22.— Holoporella porosa C. y B. =

23.— Holoporella quadrispinosa C. y B. =

24.— Holoporella tridenticulata Busk =

25.— Lagenipora verrucosa C. y B. =

26.— Lagenipora marginata C. y B. =

27.— Mamillopora cupula Smitt =

28.— Membrendoecium claustracrassum C. y B. =

29.— Micropora coriacea Esper =

30.— Micro porella gibbulosa C. y B. =

31.— Microporella tractabilis C. y B. =

32.— Osthimosta anatina Canu y Bassler =

33.— Pachycleitonia nigra C. y B. =

34.— Puellina inmoninata Couch =

35.— Puellina radiata Moll =

36.— Semihaswellia sulcosa C. y B. =

37.—Schizopodrella biaperta Michelin =

38.— Smittina reticulata McGillivray =

39.— Smittina trispinosa Johnston =

40.— Trypostega venusta Norman =

So o A A O€< ON A A A yn O an o oh. op.

BRYOZOA CHEILOSTOMATA ANTARTICOS

Las especies citadas más abajo se han obtenido de los trabajos de Waters

(1904), Calvet (1909), Kluge (1914), Thornely (1924), Livingstone (1928), Has-

tings (1943); Regick (1955-65), Moyano (1968-74) y Androsova (1972-1973),

correspondientes a las Expediciones Antárticas Belga, Francesa, Alemana, Aus-

tralásica, Discovery, U. S. Navy, Chilenas y Soviéticas.

Hasta donde se ha podido se ha actualizado la posición genérica de las

diferentes especies. Con el nombre de Retepora se ha incluido a todas las

especies de la familia Reteporidae, los que sin duda prtenecen a 3 Ó 4 géneros

diferentes.

1.— Amastigia abyssicola (Kluge) =" 2 av

2.— Amastigia antarctica (Kluge) = 2 av

3.— Amastigia cabereoides (Kluge) = 2 avil yv

4.— Amastigia gaussi (Kluge)

5.— Amastigia solida (Kluge)

6.— Arachnopusia aquilina Moyano

7.— Arachnopusia latiavicularis Moyano

8.— Arachnopusia monoceros (Busk)

9.— Beanta erecta Waters

10.— Beania livingstonei Hastings

11.— Beania scotti Hastings

12.— Bifaxaria denticulata Busk

13.— Brettia longa Waters

14.— Brettia triplex Hastings

15.— Buffonella simplex (d'Orbigny)

16.— Bugula longissima Busk

17.— Caberea darwini Busk

18.— Callopora gigantea (Kluge)

19.— Callopora onychocelloides (Calvet)

20.— Camptoplites

21.— Camptoplites

22.— Camptoplites

23.— Camptoplites

24.— Camptoplites

25.— Camptoplites

26.— Campto plites

27.— Camptoplites

28.— Camptoplites

29.— Camptoplites

30.— Camptoplites

31.— Camptoplites

32.— Camptoplites

abyssicolus (Kluge)

angustus (Kluge)

areolatus (Kluge)

asymmetricus Hastings

bicornis (Busk)

giganteus (Kluge)

latus (Kluge)

lewaldi (Kluge)

multispinosus (Kluge)

rectilinearis Hastings

reticulatus (Busk)

retiformis (Kluge)

tricornis (Waters)

33.— Carbasea curva (Kluge)

34.— Catenicella frigida Waters

35.— Chaperiella cervicornis (Busk)

36.— Chaperiella coronata (Thornely)

37.— Chaperiella cylindracea v. protecta (Waters)

38.— Chaperiella dicotoma (Kluge)

39.— Chaperiella gaussi (Kluge)

40.— Chaperiella galeata (Busk)

41.— Chaperiella

42.— Chaperiella

43.— Chaperiella

44.— Chaperiella

lepralioides (Kluge)

patulosa (Waters)

quadrispinosa (Kluge)

simplissima (Kluge)

E LE

ON -.O0P nor +2 —. O 09NNyNyk00Ny0s.£ 0 Ny n= NO PON 0 NN

45.— Cellaria diversa Livingstone

46.— Cellaria dubia Busk

47.— Cellaria lata Waters

48.— Cellaria malvinensis (Busk)

49.— Cellaria monoliorata Rogick

50.— Cellaria vitrimuralis Rogick

51.— Cellariaeforma aurorae (Livingstone)

52.— Cellariaeforma coronata Rogick

53.— Cellariaeforma extentamuralis Rogick

54.— Cellarinella dubia Waters

55.— Cellarinella foveolata Waters

56.— Cellarinella latilaminata Moyano

57 — Cellarinella laytoni Rogick

58.— Cellarinella margueritae Rogick

59.— Cellarinella njegovanae Rogick

60.— Cellarinella nodulata Waters

61.— Cellarinella nutti Rogick

62.— Cellarinella rogickae Moyano

63.— Cellarinella rossi Rogick

64.— Cellarinella roydsi Rogick

65.— Cellarinella watersi Calvet

66.— Cellarinelloides crassus Moyano

67.— Cellepora horneroides Waters

68.— Clithriellum inclusum (Waters)

69.— Cornucopina angulata (Kluge)

70.— Cornucopina lata (Kluge)

71.— Cornucopina ovalis Hastings

72.— Cornucopina pectogemma (Goldstein)

73.— Cornucopina polymorpha (Kluge)

74.— Cornucopina rotundata (Kluge)

75.— Cribrilina proyecta Waters

76.— Emballotheca contortuplicata (Calvet)

77. —Emballotheca phylactelloides (Calvet)

78.— Erymophora klugei Hastings

79.— Escharoides barica Rogick

80.— Escharoides biformata Waters

81.— Escharoides bubeccata Rogick

82.— Escharoides praestita (Waters)

83.— Escharoides tridens (Calvet)

84.— Exochella longirostris Jullien

85.— Farciminaria simplex Kluge

O + HAN »=O0OO0OORRN,NNO00 Nm - 2. NN == NNnNN-=-DNNN-*- o a mom ll A A o A

86.— Farciminellum lineare (Kluge)

87.— Fenestrulina exigua (Waters)

88.— Fenestrulina malusii (Audouin)

89.— Fenestrulina parvipora (Waters)

90.— Fenestrulina proxima (Waters)

91.— Figularia spatulata (Calvet)

92.— Flustra angusta Kluge

93.— Flustra arnaudi Androsova

94.— Flustra astrovae Androsova

95.— Flustra tenuis Kluge

96.— Flustra thysanica Moyano

97.—Flustra vulgaris Kluge

98.— Himantozoum antarcticum (Calvet)

99.— Hippadenella carsonae Rogick

100.— Hippothoa bougainvillei (d'Orbigny)

101.— Hippothoa distans McGillivray

102.— Hippothoa divaricata Lamouroux

103.— Inversiula nutrix Jullien

104.— Isoschizoporella tricuspis (Calvet)

105.— Klugeflustra vanhoffeni (Kluge)

106.— Klugeflustra drygalski (Kluge)

107.— Klugella echinata (Kluge)

108.— Kymella polaris (Waters)

109.— Labioporella adeliensis Livingstone

110.— Lacerna hosteensis Jullien

111.— Larvapora mawsoni (Livingstone)

112.— Lepralia frigida Waters

113.— Mawsonia brevimandibulata Moyano

114.— Mawsonia extensalata Rogick

115.— Mawsonia membranacea (Thornely)

116.— Megapora hyalina Waters

117.— Melicerita latilaminata Rogick

118.— Melicerita oblicua (Thornely)

119.— Membrantpora

120.— Membranipora

121.— Membranipora

122.— Membranipora

123.— Membranipora

124. — Membranipora

125.— Membrantpora

ciliata McGillivray

constancia Kluge

inconstancia Kluge

incrustans Waters

perlucida Kluge

strigosa Waters

unisertalis Waters

126.— Membraniporella antarctica Kluge

OOOO mn +. Om 40h a mn O A A == N-=-Oo00oo0oro- o. .00000m

SN E

poo)

po)

pay]

127.— Menipea patagonica (Busk)

128.— Micropora brevissima Waters

129.— Microporella ciliata (Pallas)

130.— Microporella divaricata Canu

131.— Mucronella crozetensis (Waters)

132.— Notoplites antarcticus (Waters)

133.— Notoplites crassiscutus Hastings

134.— Notoplites drygalski (Kluge)

135.— Notoplites klugei (Hasenbank)

136.— Notoplites tenuis (Kluge)

137.— Notoplites vanhoffeni (Kluge)

138.— Notoplites watersi (Kluge)

139.— Nematoflustra flagellata (Waters)

140.— Ogivalia lata (Kluge)

141.— Orthoporidra compacta (Waters)

142.— Orthoporidra setosa (Thornely)

143.— Osthimosia bicornis (Busk)

144.— Osthimosia clavata Waters

145.— Osthimosia eatonensis (Busk)

146.— Osthimosia granum (Hincks)

147.— Osthimosia milleporoides (Calvet)

148.— Osthimosia signata (Busk)

149.— Paracellaria wandelli (Calvet)

150.— Paramawsonia dennanti (McGillivray)

151.— Parasmittina hymanae Rogick

152.— Porella antarctica Powell

153.— Porella clivosa var. inerma Calvet

154.— Porella marginata (Calvet)

155.— Phylactellipora lyrulata (Calvet)

156.— Retepora antarctica Waters

157.— Retepora frigida Waters

158.— Retepora gelida Waters

159.— Retepora hippocrepis Waters

160.— Retepora laevigata Waters

161.— Retepora lepralioides Waters

162.— Retepora protecta Waters

163.— Rhamphostomella bassleri Rogick

164.— Rhamphonotus inermis (Kluge)

165.— Schizoporella eatoni v. areolata Calvet

166.— Schizoporella gelida Waters

167,— Schizoporella ridleyi McGillivray

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181.— Smittina

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abditavicularis Rogick

alticollarita Rogick

antarctica (Waters)

canui Rogick

conspicua (Waters)

crassatina (Waters)

directa (Waters)

exertaviculata Rogick

gelida (Waters)

marionensis (Busk)

obicullata Rogick

oblongata Rogick

ordinata (McGillivray)

pileata Waters

reptans (Waters)

reticulata (McGillivray)

tripora (Waters)

185.— Smittinella rubrilingulata Rogick

186.— Smittoidea acaroensis (Levinsen)

187.— Smittoidea ornatipectoralis Rogick

188.— Systenopora contracta Waters

189.— Turritigera stellata Busk

190.— Tricellaria aculeata (d'Orbigny)

191.— Toretocheilum absidatum Rogick

192.— Trilaminopora trinervis (Waters)

193.— Umbonula dentata (Waters)

194.— Romancheina martiali Jullien

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BRYOZOA CHEILOSTOMATA DE BAHIA CHILE

La siguiente lista de especies corresponde a aquellas

y sólo parcialmente publicada (ver bibliografía).

1.— Amastigia antarctica (Kluge)

2.— Amastigia gaussi (Kluge)

3.— Arachnopusia aquilina Moyano

4.— Arachnopusia monoceros (Busk)

5.— Beania erecta Waters

6.— Beania scotti Hastings

7.— Bugula longissima Busk

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(ANTARTICA)

en poder del autor

8.— Caberea darwin: Busk

9.— Camptoplites angustus (Kluge)

10.— Camptoplites bicornis (Busk)

11.— Camptoplites giganteus (Kluge)

12.— Camptoplites retiformis (Kluge)

13.— Camptoplites tricornis (Waters)

14.— Carbasea curva (Kluge)

15.— Cellaria montliorata Rogick

16.— Cellaria vitrimuralis Rogick

17.— Cellariaeforma extentamuralis Rogick

18.— Cellarinella latilaminata Moyano

19.— Cellarinella njegovanae Rogick

20.— Cellarinella rogickae Moyano

21.— Cellarinella rossi Rogick

22.— Cellarinella royds: Rogick

23.— Chapertella spinossisima (Calvet)

24.— Clithriellum inclusum (Waters)

25.— Cornucopina polymorpha (Kluge)

26.— Escharoides bubeccata Rogick

27.— Farciminellum antarcticum Hastings

28.— Fenestrulina proxima (Waters)

29.— Figularia spatulata (Calvet)

30.— Flustra angusta Kluge

31.— Flustra tenuis Kluge

32.— Flustra thysanica Moyano

33.— Flustra vulgaris Kluge

34.— Himantozoum antarcticum (Calvet)

35.— Hippothoa bougainvilles; (d'Orbigny)

36.— Inversiula nutrix Jullien

37.— Isoschizoporella tricuspis (Calvet)

38.— Klugeflustra vanhoffeni (Kluge)

39.— Kymella polaris (Waters)

40.— Mawsonia brevimandibulata Moyano

41.— Mawsonia extensalata Rogick

42.— Mawsonia membranacea (Thornely)

43.— Menipea patagonica (Busk)

44. — Melicerita latilaminata Rogick

45.— Micropora brevisssma Waters

46.— Microporella ciliata (Pallas)

47.— Nematoflustra flagellata (Waters)

48.— Notoplites drygalskiz (Kluge)

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49.— Notoplites tenuis (Kluge) = lav

50.— Notoplites vanhoffeni (Kluge) = 2 av

51.— Orthoporidra setosa (Thornely) UR NE

52.— Osthimosia bicornis (Busk) = 2 av

53.— Osthimosia eatonensis (Busk) = 2 av

54.— Osthimosia milleporoides (Calvet) = 2 av

55.— Paracellaria wandelli (Calvet) = lav

56.— Phylactellipora lyrulata (Calvet) úl

57.— Porella antarctica Powell = l av

58.— Porella clivosa v. inerma Calvet = lav

59.— Rhamphonotus inermis (Kluge) = l av

60.— Schizoporella eatoni v. areolata Calvet =0

61.— Smittina obicullata Rogick = l av

BRYOZOA CHEILOSTOMATA DE LA BAHIA DE CONCEPCION

1.— Andreella uncifera (Busk) = lav

2.— Aplousina sanchezi Viviani )

3.— Beanta magellanica (Busk) = Tav

4.— Bugula flabellata (Yhompson) ICON

5.— Bugula neritina (Linnaeus) "0

6.— Caulorhamphus spiniferum (Johnston) = l av

7.— Chaperiella acanthina (Lamouroux) =40

8.— Cryptosula pallastana (Moll) = lav

9.— Electra hastingsae Marcus =0

10.— Fenestrulina malusú (Audouin) = 0

11.— Hippothoa divaricata Lamouroux =0

12.— Hippothoa hyalina (Linnaeus) = (

13.— Lagenicella chilensis (Viviani) = lav

14.— Membranipora hyadesi Jullien = 0

15.— Membranipora tuberculata (Bosc) ="0

16.— Membranipora isabelleana (d'Orbigny) 00

17.— Schizoporella bifrons Moyano = 2 av

18.— Umbonula alvareziana (d'Orbigny) "Ia

De estas 18 especies a lo menos cinco (5, 8, 11, 12, 15) son cosmopolitas,

lo que indica el poco endemismo de esta fauna y su capacidad de adaptarse

a casi cualquier ambiente.

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ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE),

EL 25 DE JULIO DE 1975.

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GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

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