CATALOGO DE LAS ALGAS DULCEACUICOLAS DE CHILE

Pyrrophyta, Chrysophyta - Chrysophyceae, Chrysophyta - Xanthophy-

ceae, Rhodophyta, Euglenophyta y Chlorophyta (**)

por

OSCAR O. PARRA y M. GONZALEZ (*)

RESUMEN

Se presenta un catálogo sistemático de las Pyrrophyta, Chrysophyta -

Chrysophyceae, Chrysophyta - Xanthophyceae, Rhodophyta, Eugleno-

phyta y Chlorophyta de los ambientes dulceacuícolas de Chile, las que su-

man un total de 922 taxa. Se señala los lugares donde éstos han sido encon-

trados, las citas respectivas, y en algunos casos la sinonimia.

SUMMARY

A systematic catalogue of frehwater, Chrysophyta - Chrysophyceae, Chry-

sophyta - Xanthophyceae, Rhodophyta, Euglenophyta and Chlorophyta from

Chile including 922 taxa is presented. Bibliography, localities where the

species have been found and some synonyms are also given.

INTRODUCCION

En este trabajo se da a conocer la Pyrrophyta, Chrysophyta-Chrysophy-

ceae, Chrysophyta-Xanthophyceae, Rhodophyta, Euglenophyta, y Chloropriy-

ta de ambientes dulceacuícolas que han sido citadas hasta el presente pa-

ra el territorio chileno.

(*) Departamento de Botánica, Casilla 1367, Instituto de Biología Universidad de Con-

cepción, Concepción, Chile.

(**) Investigación financiada por el Consejo de Investigación Científica de la Uni-

versidad de Concepción. ;

El número total de taxa es aproximadamente 922 distribuídos de la

siguiente forma: 17 taxa de Pyrrophyta, 25 de Chrysophyceae, 20 de Xan-

thophyceae, 1 de Rhodophyta, 21 de 'Euolenophyta y 838 de Chlorophyta.

Para la ordenación taxonómica de éstos se utilizó fundamentalmente el sis-

tema propuesto por Bourrelly (1966, 1968 y 1970). Después del nombre del

taxon, se dan los lugares para los cuales han sido citados, con la cita co-

rrespondiente.

No incluímos la división Cyanophyta puesto que se encuentra en nues-

tro trabajo “Guía bibliográfica y de distribución de las Cyanophyta de Chi-

le”, publicado en Gayana, Bot. N* 32 (1976).

Creemos que tanto éste como el trabajo anteriormente señalado cons-

tituyen una etapa más en el conocimiento de la flora algolégica chilena,

ya que ambos son una recopilación de citas de trabajos efectuados tanto

por algólogos extranjeros ccmo nacionales; el primero en lo que se refiere

a ambientes dulceacuícolas y marinos y el presente sólo en cuerpos de

agua dulce de nuestro país.

Deseamos también con ésto, orientar y entregar los elementos para se-

guir realizando cuanto antes la sistemática de estos organismos y poder de

este modo proyectar futuros estudios ecológicos, biológicos y de aplicación

que tanto necesita nuestro país.

A continuación se da un cuadro donde se agrupan las divisiones con

los órdenes y sus respectivas familias indicando el número de géneros y

especies de cada una.

N* de N* de

Familia géneros especies

Orden

PYRROPHYTA

Peridiniales Gymnodiniaceae

Peridiniaceae

Glenodiniopsidaceae

Ceratiaceae

CHRYSOPHYTA - CHRYSOPHYCEAE

Stichogloeales Stichogloeaceae

Ochromonadaceae

Dinobryaceae

Synuraceae

(CO

CHRYSOPHYTA - XANTHOPHYCEAE

Rhizochloridales Rhizochloridaceae 1 Z

(= Stipitococcaceae)

del

Orden

Mischococcales

Tribonematales

Vaucheriales

Euglenales

Colaciales

Acrochaetiales

Volvocales

Tetrasporales

Chlorococcales

Ulothricales

Ulvales

Chaetophorales

Trentepohliales

Oedogoniales

Siphonocladales

Familia

Chlorobotrydaceae

Mischococcaceae

Sciadiaceae

Tribonemataceae

Vaucheriaceae

EUGLENOPHYTA

Euglenaceae

Peranemaceae

Petalomonadaceae

Colaciaceae

RHODOPHYTA

Audouinellaceae

CHLOROPHYTA

Chlamydomonadaceae

Volvocaceae

Tetrasporaceae

Asterococcaceae

Chlorangiellaceae

Chlorococcaceae

Palmellaceae

Oocystaceae

Micractiniaceae

Dictyosphaeriaceae

Scenedesmaceae

Hydrodictiaceae

Coccomyxaceae

Ulothricaceae

Microsporaceae

Cylindrocapsaceae

Ulvaceae

Prasiolaceae

Chaetophoraceae

Aphanochaetaceaes

Chaetosphaeridiaceae

Coleochaetaceae

Trentepohliaceae

Oedogoniaceae

Cladophoraceae

a. hire

N* de

__ Géneros

ha a A

RF 0

pan

QN =P? 0drpNerr0mrDNYO0DN?>r”?Oo0rDvoa uE

N* de

especies

“YD — ==

oo an

==) (05)

=—

== 0 0 NT: NDOD 0 0Q00d0mN XA 2» Qi 0

SO!

N* de N* de

Orden Familia géneros especies

Zygnematales Zygnemataceae 9 58

Mesotaeniaceae 3) 12

Desmidiaceae 18 295

Charales Characeae 3 11

PYRROPHYTA

DINOPHYCEAE

PERIDINIALES

GYMNODINIACEAE

Gymnodinium Stein, 1878.

Gymnodintum sp.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

PERIDINIACEAE

Peridinium Ehrenberg, 1832.

P. cinctum (Mueller) Ehrenberg, 1838.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, en plancton y pozas (Thomasson 1963,

pp. 66 y 102).

P. insconspicuum Lemmermann, 1900.

Prov. Cautín, Lago Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 66);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102); Prov.

Osorno, Lago Bonita, plancton (Thomasson 1963, p. 66).

P. lomnicktúi Woloszynska, 1916.

Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 66).

P. volzú Lemmermonn, 1905.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 45);

Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos, plancton (Thomasson 1963,

p. 66).

P. volzti var. cinctiforme Lefevre, 1927.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

66, fig. 32:5).

P. volzú% fma. compressum (Lindemann) Lefevre, 1932.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

P. willei Huitfeld-Kaas, 1900.

Prov. Cautín, Lago Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 66),

Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 45), Lago Pichilafquén,

plancton (Thomasson 1963, p. 56); Prov. Valdivia, Lago Calafquén,

plancton (Thomasson 1963, p. 66), Lago Pellaifa, plancton (Thomas-

son, 1c.), Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206), La-

go Rinihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203); Prov. Osorno, Lago

Bonita, plancton (Thomasson 1963, p. 66); Prov. Llanquihue, Lago

Llanquihue y Lago Todos los Santos, plancton (Thomasson 1963, p.

66); Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955,

p. 196).

P. willei íma. lineatum Lindemann, 1918.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 45).

Peridinium sp.

Prov. Valparaíso, Laguna Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 306,

lám. 3, fig. 7).

Peridinium sp.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

Peridinium sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 45).

Peridinium sp.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

Peridinium sp.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 204).

Peridinium sp.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 196).

GLENODINIOPSIDACEAE

Glenodinium (Ehrenberg) Stein, 1883.

G. oculatum Stein, 1883.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

CERATIACEAE

Ceratium Schrank, 1793.

Ceratium sp.

Prov. Magallanes, Patagonia, Lago Maravilla (Borge, 1901, p. 5).

CHRYSOPHYTA

CHRYSOPHYCEAE

STICHOGLOEALES

STICHOGLOEACEAE

Stichogloea Chodat, 1897.

St. doederleinú (Schmidle) Wille, 1911.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 36).

OCHROMONADALES

OCHROMONADACEAE

Stipitochrysis Korshikov, 1941.

St. monorhiza Korshikov, 1941.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

DINOBRYACEAE

Dinobryon Ehrenberg, 1835.

D. acuminatum Ruttner

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

HA A

cylindricum Imhof, 1833.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton, pozas (Thomasson 1963, pp.

45 y 101), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56), La-

go Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 59); Prov. Valdivia, La-

go Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 66), Lago Pellaifa, planc-

ton (Thomasson 1963, 1c.), Lago Panguipulli, plancton (Thomasson

1955, p. 206), Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 205); Prov.

Llanquihue, Lago Todos los Santos, plancton (Thomasson 1963, p.

66).

cylindricum var. divergens Imhof

Prov. Valdivia, Lago Queilleihue (Asprey et al. 1964, p. 19); Prov.

Magallanes, Laguna II (Asprey et al. 1964, p. 19).

cylindricum var. palustre Lemmermann, 1900.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 45); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 66), Lago

Puyehue, plancton (Thomasson 1963, p. 66); Prov. Llanquihue, Lago

Todos los Santos, plancton (Thomasson 1963, p. 65).

divergens Imhof, 1887.

Prov. Concepción, Laguna Chica San Pedro, plancton (Thomasson

1963, p. 71), Laguna Verde (Parra 1973, p. 6, fig. 5); Prov. Arauco,

Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov. Cautín, La-

go Villarrica, plancton (Daday 1902 y Thomasson 1963, p. 45), Lago

Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56); Prov. Valdivia, La-

go Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 66), Lago Panguipulli,

plancton (Thomasson 1955, p. 206), Lago Pellaifa, plancton y en po-

zas (Thomasson 1963, pp. 66 y 102), Lago Ranco, plancton (Tho-

masson 1963, p. 62), Lago Puyehue, plancton (Thomasson 1963, p.

62), Lago Rinihue, plancton (Thomasson 1955, p. 205); Prov. Osorno,

Lago Rupanco, plancton (Thomasson 1963, p. 66), Lago Bonita, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 66); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue,

plancton (Thomasson 1963, p. 63), Lago Todos los Santos, plancton

(Thomasson 1963, p. 66); Prov. Magallanes, Lago Fagnano, planc-

ton (Thomasson 1955, p. 195).

D. divergens var. schauinslandii (Lemmermann) Brunnthaler

Prov. Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 59).

eurystoma (Stokes) Lemmermann, 1900.

Prov. Valdivia, Lago Rinihue, plancton (Thomasson 1955, p. 204).

D. sertularia Ehrenberg, 1835.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101); Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson

1963, p. 59), Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 205), Lago

Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

RSU = e:

Dinobryon sp.

Prov.

Magallanes, Patagonia, Lago Maravilla (Borge 1901, p. 5).

SYNURACEAE

Chrysosphaerella Lauterborn, 1896 emend. Korshikov, 1941.

longispina Lauterborn,

1896.

Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206),

Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203); Prov. Magallanes,

Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

Mallomonas Perti,

1851 emend. Bourrelly, 1957.

alpina Pascher et Ruttner in Pascher et Lemmermann, 1913.

Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 45).

Iwanoff cfr. fastigiata Zacharias

Valdivia, Lago Riñnihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203).

elongata Reverdin, 1919.

Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 45);

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 66).

CH:

Prov.

M. caudata

Prov.

M. cfr.

Prov.

Mallomonas

Prov.

Mallomonas

Prov.

Mallomonas

Prov.

Mallomonas

Prov.

Mallomonas

Prov.

Mallomonas

Prov.

fastigiata Zacharias, 1898.

Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

sp.

Concepción, Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 6).

sp.

Concepción, Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 6).

sp.

Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

sp.

Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 204).

sp.

Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

sp.

Llanquihue, Lago Todos los Santos (Thomasson 1963, p. 66).

E y

Synura Ehrenberg, 1835.

S. cfr. petersení Korshikov, 1941.

Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

S. uvella Ehrenberg emend. Korshikov

Prov. Magallanes, Laguna ll (Asprey et al. 1964, p. 19).

XANTHOPHYCEAE

RHIZOCHLORIDALES

RHIZOCHLORIDACEAE (= STIPITOCOCCACEAE)

Stipitococcus West et West, 1898.

Stipitococcus vas Pascher, 1932.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

Stipitococcus sp.

Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

MISCHOCOCCALES

CHLOROBOTRYDACEAE

Chlorobotrys Bohlin, 1901.

Ch. regularis (West) Bohlin, 1901.

Prov. Concepción, Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 6, fig.

6); Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1901,

Pp. .20).

MISCHOCOCCACEAE

Mischococcus Naegeli

M. confervicola Naegeli, 1849. |

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 14).

SCIADIACEAE

Ophiocytium Naegeli, 1849.

cochleare (Eichwald) A. Braun, 18055.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 14).

O. majus Naegeli, 1849.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 14).

O. parvulum (Perti) A. Braun, 1855.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 14).

TRIBONEMATALES

TRIBONEMATACEAE

Tribonema Derbes et Solier, 1856.

cylindricum Heering, 1906.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 11, lám. 2 fig. 1, como

Conferva cylindrica Borge).

elogatum Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56);

Prov. Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 66),

Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, 1c.), Lago Quilleihue,

plancton (Thomasson 1963, 1l.c.); Prov. Llanquihue, Lago Todos los

Santos, plancton (Thomasson 1963, 1.c.).

tenerrimus Heering, 1906.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 11, como Conferva

tenerrima (Kuetz.) Lagerheim).

viride Pascher, 1925.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901 p, 10, como Conferva

bombycina (Ag.) Lagerheim fma.).

Tribonema sp.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

VAUCHERIALES

VAUCHERIACEAE

Vauchería De Candolle, 1801.

V. dillwyni (Weber et Mohr) Agardh

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 95).

V. geminata (Vaucher) De Candolle, 1805.

Prov. Talca, Talca y Curepto (Espinosa 1923, p. 95).

V. racemosa (Vaucher) De Candolle

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 12).

V. repens Hassall

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 95); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 12).

V. sessilis (Vaucher) De Candolle

Prov. Aconcagua, Zapallar, El Cajón (Johow 1945, p. 21); Prov. Ma-

gallanes, Tierra del Fuego, Bahía O.ange, sobre tierra húmeda

(Hariot 1889, p. 31).

V. subarechavaletae Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 12).

—

7. terrestris (Vaucher) De Candolle

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 95).

Vaucheria sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 12).

EUGLENOPHYTA

EUGLENOPHYCEAE

EUGLENALES

EUGLENACEAE

Euglena Ehrenberg, 1830.

E. acus Ehrenberg, 1838.

Prov. Concepción, Concepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y Gon-

zález 1973, p. 53, lám. 10, fig. 1), Concepción (Parra et al. 1974, p.

113, en estadios larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

—

E. fusca (Klebs) Lemmermann, 1910.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

E. spirogyra Ehrenberg, 1838.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

Euglena sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 307,

lám. 3, fig. 8).

Gyropaigne Skuja, 1939.

G. kosmos Skuja, 1939.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

63).

Helikotropis Pochmann, 1955.

H. okteres Pochmann, 1955.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103, fig.

33:10).

Lepocinclis Perty, 1849.

Lepocinclis sp.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

Phacus Dujardin, 1841

Ph. acuminatus Stokes, 1885.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

Ph. curvicauda Swirenko, 1915.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

Ph. longicauda (Ehrenberg) Dujardin, 1841.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 55).

As EL.

Ph. pleuronectes (Mueller) Dujardin, 1841.

Prov. Aconcagua, Zapallar, en aguas semisalobres de las pequeñas

lagunillas del Mar Bravo (Johow 1945, p. 20); Prov. Santiago, San-

tiago, suelo (Pérez Canto 1929, pp. 147 y 148).

Ph. tortus (Lemmermann) Skvortzow, 1928.

Prov. Concepción, Concepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y Gon-

zález 1973, p. 53, lám. 10, fig. 2), Concepción (Parra et al. 1974, p.

113, en estadios larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

Phacus sp.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

Trachelomonas Ehrenberg, 1833.

T. elliptica (Playfair) Deflandre, 1927.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

T. hispida (Perty) Stein, 1883.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1975, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus); Prov. Magalla-

nes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

T. hispida var. punctata Lemmermann, 1906.

Prov.Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102).

T. volvocina Ehrenberg, 1833.

Prov. Santiago, Santiago, suelo (Pérez Canto 1929, pp. 147 y 148);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 102), Lago

Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 66).

Trachelomonas sp.

Prov. Concepción, Concepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y Gon-

zález 1973,p. 53, lám:.. 10, fig. 3):

PERANEMACEAE

Peranema Dujardin, 1841.

P. trichophorum (Ehrenberg) Stein, 1878.

Prov, Santiago, Santiago, suelo (Pérez Canto 1929, pp. 147 y 148).

Petalomonas Stein, 1878.

Petalomonas sp. :

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

e, 1

COLACIALES

COLACIACEAE

Colacium Ehrenberg, 1832.

C. vesiculosum Ehrenberg, 1832.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 66).

RHODOPHYTA

RHODOPHYCEAE

FLORIDEOPHYCIDAE

ACROCHAETIALES

AUDOUINELLACEAE

Audouinella Bory de St Vincent, 1823.

Audouinella sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8, como Chantrasía sp.).

CHLOROPHYTA

CHLOROPHYCEAZE

VOLVOCALES

CHLAMYDOMONADACEAE

Chlamydomonas Ehrenberg, 1833.

Ch. ehrenbergíí Goroschankin, 1890.

Prov. Santiago, Santiago (Pérez Canto 1929, p. 148).

Ch. dinobryonúi G.M. Smith, 1920.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

Ch. siderogloea Pascher et Jahoda, 1928.

Prov. Osorno, Lago Bonita, plancton (Thomasson 1963, p. 62).

Chlamydomonas sp.

Prov. Concepción, Concepción, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus) (Parra et al. 1974, p. 113).

Chlamydomonas sp.

Prov. Osorno, Lago Bonita, plancton (Thomasson 1963, p. 62).

VOLVOCACEAE

Eudorina Ehrenberg, 1831.

cylindrica Thomasson

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46);

Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206),

Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 202), Lago Calafquén,

plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Llanquihue, Lago Todos los

Santos, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

E. elegans Ehrenberg, 1832.

Prov. Santiago, Santiago, suelo (Pérez Canto, p. 148); Prov. Con-

cepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y González 1973, p. 53, lám. 11,

fig. 1); Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Daday, 1902), Lago

Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), Lago Pichilafquén,

plancton (Thomasson 1963, p. 56); Prov. Valdivia, Lago Riñihue,

plancton (Thomasson 1955, p. 202); Prov. Osorno, Lago Rupanco,

plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Llanquihue, Lago Llanqui-

hue, plancton (Thomasson 1963, p. 67) y Lago Todos los Santos,

plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Magallanes, Patagonia

(Borge 1901, p. 12).

Gonium Mueller, 1773.

G. pectorale Mueller, 1773.

Prov. Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 93).

Pandorina Bory, 1824.

P. morum (Mueller) Bory, 1824.

Pl,

Prov. Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 93); Prov. Cautín, Lago

Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963, p. 102); Prov.

Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206), La-

go Rinihue, plancton (Thomasson 1955, p. 202); Prov. Osorno, Lago

Bonita, plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Magallanes, Pata-

gonia (Borge 1901, p. 12).

Pleodorina Shaw, 189%.

californica Shaw, 1894.

Prov.Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 7, fig. 7).

Volvox (Linnaeus) Ehrenberg, 1830.

V. aureus Ehrenberg, 1838.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plot (Thomasson 1963, p. 46, fig.

33:1), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p.. 56): “Prov.

— Ai

Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 12).

Volvox sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 6, fig. E).

TETRASPORALES

TETRASPORACEAE

Apiocystis Naegeli, 1849.

A. brauniana Naegeli, 1849.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

Paulschulzia Skuja, 1948.

P. pseudovolvor (Schutz emend. Teiling) Skuja, 1948.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46);

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

Schizochlamys A. Braun, 1849.

Sch. gelatinosa A. Braun, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 5, fig. O); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103); Prov. Llan-

quihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63, fig. 39:8).

Tetraspora Link, 1809.

T. lacustris Lemmermann, 1915.

Prov. Concepción, Laguna Chica, San Pedro (Thomasson 1963, p.

71); Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46);

Prov. Osorno, Lago Rupanco, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

T. lubrica (Roth) Agardh, 1824.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en rocas sumergidas cerca del lago

(Thomasson 1963, p. 24).

Gloeochaete Lagerheim, 1833.

G. wittrockiana Lagerheim, 1883.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 16).

ASTEROCOCCACEAE

Chlamydocapsa Fott, 1972.

- Chl. planctonica (West et West) Fott, 1972.

2357

Prov. Osorno, Lago Rupanco, plancton (Thomasson 1963, p. 67, como

Gloeocystis gigas var. pallida); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge

1901, p. 16 como Gloeocystis gigas (Kuetzing) Lagerheim).

Pseudosphaerocystis Woronichin, 1931.

Ps. lacustris (Lemmermann) Nováková, 1965.

Prov. Cautín, Lago Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 67, como

Gemellicystis neglecta Teiling, 1946).

CHLORANGIELLACEAE

Stylosphaeridium Geitler et Gimesi, 1925.

S. stipitatum Geitler et Gimesi in Geitler, 1925.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

CHLOROCOCCALES

CHLOROCOCCACEAE

Characium A. Braun, 1849.

Ch. braun Bruegger

Prov. Concepción, Concepción, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus) (Parra et al. 1974, p. 113).

Ch. longipes Rabenhorst

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

Ch. minutum A. Braun

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

Ch. sieboldíi A. Braun

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. N).

Polyedriopsis Schmidle, 1898.

P. spinulosa Schmidle, 1898.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 7, fig. 8).

Tetraedron Kuetzing, 1845.

T. caudatum (Corda) Hansgirg, 1888.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

T. caudatum (Corda) Hansgirg var. longispinum Lemmermoann, 1898.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

T. constrictum G.M. Smith, 1920.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 295,

lame! S):

T. enorme (Ralfs) Hansgirg, 1888.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

T. longispinum Rabenhorst

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. C).

T. tetraedricum Naegeli

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. T).

T. trigonum (Naegeli) Hansgirg, 1888.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

PALMELLACEAE

Sphaerocystis Chodat, 1897.

Sph. schroeteri Chodat, 1897.

Prov. Concepción, Laguna Chica San Pedro, plancton (Thomasson

1963, p. 71); Prov. Arauco, Lago Lomalhue, plancton (Thomasson

1963, p. 72); Prov. Cautín, Lago Huilipilún, plancton (Thomasson

1963, p. 67), Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56); Prov. Valdivia,

Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 67), Lago Pellaifa,

plancton (Thomasson 1.c.), Lago Quilleihue, plancton (Thomasson

l.c.), Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206), Lago Ri-

nihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203); Prov. Llanquihue, Lago

Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Magallanes,

Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195). En todos los la-

gos citados, como Gloeococcus schroeteri (Chodat) Lemmermann.

OOCYSTACEAE

Ankistrodesmus Corda, 1838.

A. falcatus (Corda) Ralfs, 1848.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas, plancton (Navarro y Avaria 1971,

p. 296, lám. I, fig. 2); Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44,

lám. 3, fig. H), Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94); Prov. Con-

cepción, Laguna Verde (Parra 1973,p. 9, figs. 17 y 18), Concepción

(Parra et al. 1974, p. 113, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus); Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton

(Thomasson 1963, p. 72); Prov. Cautín, Lago Huilipilún, plancton

(Thomasson 1963, p. 67), Lago Villarrica, plancton de pozas y del

lago (Thomasson 1963, pp. 46, 101 y 102), Lago Pichilafquén, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 63); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton

de pozas y del lago (Thomasson 1963, pp. 60 y 103); Prov. Osorno,

Lago Bonita (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Llanquihue, Lago Llan-

quihue, plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Magallanes, Pata-

gonia (Borge 1901, p. 14, como Rhaphidium polymorphum Fresen).

A. falcatus var. acicularis (A. Braun) West, 1904.

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 9).

A. falcatus var. spirilliformis West, 1904.

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 9).

A. mirabilis (West et West) Lemmermann, 1908.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 295,

lám. I, fig. 1, como Ankistrodemus falcatus (Corda) Ralfs var.

mirabilis West et West).

Chlorella Beijerinck, 1890.

Chlorella saccharophila (Krieger) Migula var. ellipsoidea (Gerneck)

Fott et Nováková, 1969.

Prov. Valparaíso, Isla Masatierra (Múnster Stróm 1953, p. 89 como

Chlorella ellipsoidea Gerneck, 1907.

Chlorella sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 297).

Chodatella Lemmermann, 1898.

Ch. citriformis Snow, 1903.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

67).

Ch. longiseta Lemmermann, 1898.

Prov. Concepción Laguna Verde (Parra 1973, p. 8, fig. 12).

Ch. quadriseta Lemmermann, 1898.

Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

Echinosphaerella G.M. Smith, 1920.

E. limmetica G.M. Smith, 1920.

Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

Eremosphaera De Bary, 1858.

E. viridis De Bary, 1858.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. D).

TÓ:

Franceiía Lemmermann, 1898.

droescheri (Lemmermann) G.M. Smith, 19833.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 9, fig. 14).

ovalis (Francé) Lemmermann, 1898.

Prov. Concepción. Laguna Verde (Parra 1973, p. 9, fig. 15).

Kirchneriella Schmidle, 1893.

contorta (Schmidle) Bohlin, 1897.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

67).

obesa (W. West) Schmidle, 1893.

Prov. Cautín, Lago Huilipilún (Thomasson 1963, p. 67), Lago Villa-

rrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), Lago Pichilafquén, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 56); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas

(Thomasson 1963, p. 103), Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1953,

p: 202):

Monoraphidium Legnerová, 1969.

griffithii (Berkel) Legnerová, 1969.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. H, como

Ankistrodesmus aciculare A. Braun; y como Ankistrodesmus du-

plexr Kuetz., Solari loc. cit., fig. K).

contortum (Thuret in Brébisson) Legnerová, 1969.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103 como

Ankistrodesmus falcatus (Corda) .Ralfs var. spilliformis G.S

West).

Nephrocytium Naegeli, 1849.

agardhianum Naegeli, 1849.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

limneticum (G.M. Smith) G.M. Smith, 1933.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

lunatum W. West, 1892.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

Oocystis Naegeli, 1855.

borgei Snow, 1903.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 204);

Prov. Magallanes, Lago Fagnano (Thomasson 1955, p. 195).

crassa Wittrock, 1879.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 202);

Prov. Magallanes, Lago Fagnano (Thomasson 1955, p. 195).

elliptica West, 1892.

Prov. Cautín, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

. Cf. elliptica fma. minor West, 1892.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 204).

. gloeocystiformis Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p.

23).

. naegelii A. Braun, 1855.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15).

. natans (Lemmermann) Lemmermann, 1908.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46); Prov.

Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

solitaria Wittrock in Wittrock et Nordstedt, 1879.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46); Prov.

Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203), Lago

Calafquén (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Llanquihue, Lago Llan-

quihue, plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Magallanes, Pata-

gonia (Borge 1901, p. 15).

solitaria var. maxima Gomont, 1896.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p.

23).

. solitaria íma. major Wille, 1879.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 15, como Oocystis

naegelii A. Braun).

Oocystis sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 297,

lám. IIL, fig. 1).

Oocystis sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

Quadrigula Printz, 1915.

closterioides Printz, 1915.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 296,

lám. 1, fig. 9).

Selenastrum Reinsch, 1867.

S. bibraianum Reinsch, 1867.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 296,

lám. V, fig. 3); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson

1963, .p: 102);

S. gracile Reinsch, 1867.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p, 8, fig. 11).

minutum (Naegeli) Collins, 1909.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

S. westíí G.M. Smith, 1920.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

Treubariía Bernard, 1908.

T. triappendiculata Bernard, 1908.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 9, fig. 16); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

Trochiscia Kuetzing, 1845.

arguta (Reinsch) Hansgirg, 1888.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 16).

T. aspera (Reinsch) Hansgira, 1888.

Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

T. reticularis (Reinsch) Hansgirg, 1888.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 16), Isla Desolación,

Pto. Augusto (Borge 1906, p. 23).

MICRACTINIACEAE

Micractinium Fresenius, 1858.

M. pusillum Fresenius, 1858.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 294,

lám. 1, fig. 5; lám. V, fig. 1); Prov. Concepción, Laguna Verde (Pa-

Ta LAS. O. Zeta. 9).

Golenkinia Chodat, 1894.

G. radiata (Chodat) Wille, 1911.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 8, fig. 10), Estero

Lenga (Rivera, Parra y González 1973, p. 54, lám. 10, fig. 4).

DICTYOSPHAERIACEAE

Botryococcus Kuetzing, 1849.

B. braun Kuetzing, 1849.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 301,

lám. III, fig. 4); Prov. Concepción, Laguna Chica San Pedro, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 71); Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton

(Thomasson 1963, p. 56), Lago Huilipilún, plancton (Thomasson

(Thommasson 1963, p. 56), Lago Huilipilún, plancton (Thomasson

1963, p. 67), Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46); Prov.

Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 67), Lago

Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 67), Lago Panguipulli, planc-

ton (Thomasson 1955, p. 206), Lago Riñihue, plancton (Thomasson

1955, pp. 202 y 203), Lago Ranco, plancton (Thomasson 1963, p. 67),

Lago Puyehue, plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Osorno,

Lago Rupanco, plancton (Thomasson 1963, p. 67); Prov. Llanquihue,

Lago Llanquihue y Lago Todos los Santos, plancton (Thomasson

1963, p. 67); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 16).

B. protuberans West et West

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46);

Prov. Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 67);

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

Dimorphococcus A. Braun, 1855.

D. lunatus A. Braun, 1855.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifta, pozas (Thomasson 1963, p. 1083).

Dictyosphaerium Naegeli, 1849.

D. ehrenbergianum Naegeli, 1849.

Prov. Cautín, Lago Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 67).

D. pulchellum Wood, 1874.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 29%,

lám. 1, fig. 4; lám. V, fig. 2); Prov. Concepción, Laguna Verde (Pa-

rra 1973, p. 10, fig. 29); Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Tho-

masson 1963, p. 72); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Tho-

masson 1963, p. 56), Lago Villarrica, plancton y en pozas cerca del

lago (Thomasson 1963, pp. 46, 101 y 102); Prov. Valdivia, Lago Pe-

llaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103), Lago Panguipulli, plancton

(Thomasson 1955, p. 206), Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955,

p. 202); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson

1963, p. 63); Prov. Magallanes, Lago Fagnano (Thomasson 195), p.

195), Patagonia (Borge 1901, p. 15).

5 —

Cr.

Se.

SCENEDESMACEAE

Actinastrum Lagerheim, 1888.

hantzschi Lagerheim, 1882.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas, plancton (Navarro y Avaria 1971,

p. 297, lám. 1, fig. 3; lám. V, fig. 7); Prov. Santiago, Santiago (Solari

1963, p. 44, lám. 3, fig. J).

Coelastrum Naegeli, 1849.

cambricum Archer, 1868.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

microporum Naegeli in Braun, 1855.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus); Prov. Cautín,

Lago Villarrica, plancton y en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, pp. 46 y 102); Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Tho-

masson 1955, p. 206), Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p.

202); Prov. Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, p.

198), Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195), Patagonia

(Borge 1901, p. 13).

proboscideum Bohlin, 1897.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 102), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

sphaericum Naegeli, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. R).

Crucigenia Morren, 1930.

quadrata Morren, 1930.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue (Thomasson 1955, p. 203).

rectangularis (A. Braun) Gay, 1891.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56);

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 2083);

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

Hofmania Chodat, 1900.

lauterborni (Schmidle) Wille

Prov. Cautín, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206);

Prov. Valdivia, plancton (Thomasson 1955, p. 203).

Scenedesmus Meyen, 1829.

acuminatus (Lagerheim) Chodat, 1902.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 298,

E Ñ

Sc.

Se.

lám. 1, fig. 12; lám. IV, fig. 9, como Se. falcatus Chodat); Prov. San-

tiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. M, como Selenastrum

acuminatum Lagerheim); Prov. Concepción, Estero Lenga (Rivera,

Parra y González 1973, p. 54, lám. 11, fig. 3), Concepción (Parra

et al. 1974, p. 113, en estadios larvales de Caudiverbera caudiver-

bera (Linnaeus); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Tho-

masson 1963, p. 56, como Sc. falcatus Chodat).

acutiformis Schroeder, 1897.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 13).

acutus Meyen, 1829.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. E); Prov.

Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 11, fig. 23, como Sc.

dimorphus (Turpin) Kuetzing); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge

1901, p. 13, como Sc. obliquus (Turpin) Kuetzing).

antennatus Brébisson

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. L).

arcuatus Lemmermann, 1899.

P:ov. Cautín, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206);

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203).

arcuatus var. bicaudatus (Guglielmetti-Printz) Chodat, 1926.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

bicaudatus (Hansgirg) Chodat, 1926.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

bijugatus var. alternans (Reinsch) Hansgirg

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94).

brevispina (G.M. Smith) Chodat, 1926.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

carinatus (Lemmermann) Chodat, 1913.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

ecornis (Ralís) Chodat, 1926.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

ecornis var. disciformis Chodat, 1902.

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 24, como Sc.

bijugatus (Turpin) Kuetzing); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, planc-

ton y pozas (Thomasson 1963, pp. 68 y 103, como Sc. bijugatus

(Turpin) Kuetzing); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 13,

como Sc. bijugatus (Turpin) Kuetzing).

ellipsoiddeus Chodat, 1926.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 11, fig. 24).

ET y ME

Sc.

SC:

Sc.

longus Meyen var. maegelii (Brébisson) Smith, 1920.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 297,

lám. 1, figs. 10 y 11; lám. IV, figs. 6-8).

obliquus (Turpin) Kuetzing

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94); Prov. Con-

cepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 11, fig. 25), Concepción (Pa-

rra et al. 1974, p. 113, en estadios larvales de Caudiverbera cau-

diverbera (Linnaeus); Prov. Chiloé, Castro (Espinosa 1917, pp. 56

y 83).

obliquus var. dimorphus (Turpin) Hansgirg

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94).

opoliensis P. Richter, 1896.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 11, fig. 26).

ovalternus Chodat, 1926.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton, pozas (Thomasson 1963,

pp. 60 y 103), Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

quadricauda (Turpin) Brébisson, 1835.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 298,

lám. I, figs. 13 y 14); Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44,

lám. 3, fig. G); Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94); Prov. Con-

cepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y González 1973, p. 55, lám.

11, fig. 2), Laguna Verde (Parra 1973, p. 12, fig. 27), Concepción

(Parra et al. 1974, p. 113, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton

(Thomasson 1963, p. 56); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton, po-

zas (Thomasson 1963, pp. 60 y 103); Prov. Llanquihue, Lago Llan-

quihue, plancton (Thomasson 1963, p. 68); Prov. Magallanes, Pata-

gonia (Borge 1901, p. 13).

quadricauda fma. granulatus Hortobagyi, 1960.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 12, fig. 28), Estero

Lenga (Rivera, Parra y González 1973, p. 55, lám. 11, fig. 4).

quadricauda var. horridus Kirchner

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 13).

spinosus Chodat, 1913.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 12, figs. 29 y 30).

subspicatus Chodat, 1926.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 298,

lám. 1, figs. 15 y 16, como Sc. abundans (Kirchner) Chodat); Prov.

Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94, como Sc. qua-

dricauda ífma. abundans Kirchner); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa,

pozas (Thomasson 1963, p. 103, como Sec. abundans (Kirchner) Cho-

dat); Prov. Chiloé, Castro (Espinosa 1917, pp. 56 y 83, como £c.

quadricauda íma. abundans Kirchner).

Scenedesmus sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 5, fig. PF).

Scenedesmus sp.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

Tetradesmus G.M. Smith, 1913.

T. wisconsinensis G.M. Smith, 1913.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 10, fig. 22); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, pp. 60 y 68).

Tetrastrum Chodat, 1895.

T. elegans Playfair

Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

HYDRODICTYACEAE

Euastropsis Lagerheim, 1894.

E. richteri (Schmidle) Lagerheim, 1895 forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 14).

Pediastrum Meyen, 1829.

P. angulosum (Ehrenberg) Meneghini var. asperum (A. Braun) Sulek

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94, como

Pediastrum duplex Meyen var. asperum (A. Braun) Hansgirg).

P. araneosum (Raciborski) G.M. Smith var. rugulosum

(West) G.M. Smith, 1916.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

P. boryanum (Turpin) Meneghini, 1840.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. P); P.ov.

Concepción, Laguna Chica San Pedro, plancton (Thomasson 1963,

p. 71), Estero Lenga (Rivera, Parra y González 1973, p. 54, lám. 10,

fig. 5), Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios larvales de

Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus); Prov. Arauco, Lago Lanal-

hue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov. Cautín, Lago Pichilaf-

quén, plancton (Thomasson 1963, p. 56, fig. 33:4); Prov. Valdivia,

Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60), Lago Calafguén,

plancton (Thomasson 1963, p. 68), Lago Quilleihue, plancton (Tho-

masson 1.c.); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Tho-

masson 1963, p. 63); Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton

(Thomasson 1955, p. 195), Patagonia (Borge 1901, p. 14), Lago Roca,

plancton (Thomasson 1955, p. 198).

P. boryanum var. boryanum

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94, como P.

integrum Naegeli var. braunianum (Grunow) Nordstedt).

P. boryanum var. granulatum (Kuetzing) A. Braun

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94), Santiago

(Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. O); Prov. Magallanes, Patagonia

(Borge 1901, p. 14).

P. boryanum var. longicorne Reinsch, 1867.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72),

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68) Prov.

Osorno, Lago Bonita (Thomasson 1963, p. 68); Prov. Llanquihue,

Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1l.c.); Prov. Magallanes, Pa-

tagonia (Borge 1901, p. 14).

P. duplex Meyen, 1829.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 293,

lám. 1, figs. 6 y 7; lám. V, figs. 5 y 6); Prov. Santiago, Santiago,

Hospital (Espinosa 1923, p. 94); Prov. Concepción, Laguna Verde

(Parra 1973, p. 10, figs. 20 y 21), Concepción (Parra et al. 1974, p.

113, en estadios larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus);

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 102), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56);

Prov. Valdivia, Lago Pelllaifa, plancton y en pozas (Thomasson

1963, pp. 60 y 103), Lago Calafquén (Thomasson 1963, p. 68); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 14).

P. duplex Meyen var. duplex

Prov. Santiago, Santiago, (Solari 1963, p. 44, lám. 3, fig. 1, como

Pediastrum pertusum Kuetzing, 1845 y como Pediastrum pertusum

var. clathratum A. Braun, 1850).

P. integrum Naegeli var. brauntanum (Grunow) Nordstedt

forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 13).

P. kawraiskyi Schmidle, 1897.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p.

195), Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p. 23) .

P. kawraiskyi Schmidle forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 13).

P. muticum Kuetzing var. crenulatum Prescott, 1944.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancion (Thomasson 1955, p. 195).

P. simplex Meyen, 1829.

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94, como P.

simplex var. duoderianum (Bailey) Rabenhorst).

P. simplex var. compactum Chodat, 1902.

Prov. Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 94).

P. tetras (Ehrenberg) Ralís, 1844.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 290,

lám. 1, fig. 8); Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 3,

fig. F, como P. ehrenbergíl var. truncatum A. Braun, 1855, y lám. 3,

fig. S, como P. ehrenbergíi (Corda) A. Braun, 1855), Santiago, Hos-

pital (Espinosa 1923, p. 94); Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton

(Thomasson 1963, p. 72); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas

cerca del lago (Thomasson 1963, p. 102); Prov. Valdivia, Lago Pe-

llaifa, en pozas (Thomasson 1963, p. 103) y en plancton (Thomasson

1963, p. 68, como P. tetras var. tetraodon (Corda) Hansgirg 1886);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 14).

Laa

Pediastrum sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 6, fig. D).

COCCOMYXACEAE

Elakatothrix Wille, 1898.

E. gelatinosa Wille, 1898.

Prov. Valdivia, Lago Puyehue, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

ULOTHRICALES

ULOTHRICACEAE

Geminella Turpin, 1828.

G. interrupta (Turpin) Lagerheim, 1883.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

Gloeotila Kuetzing, 1843.

G. mucosa Kuetzing

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

Stichococcus Naegeli, 1849.

St. subtilis (Kuetzing) Klercker, 1896.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9, como Ulothrix

subtilis Kuetzing).

Ulothrix Kuetzing, 1836.

U. implexa (Kuetzing) Kuetzing, 1849.

Prov. Concepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y González 1973,

1.00%

U. tenerrima Kuetzing, 1843.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 4, fig. F).

U. variabilis Kuetzing, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 4, fig. H).

Ulothrix sp.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

Uronema Lagerheim, 1887

U. africanum Borge, 1928

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

MICROSPORACEAE

Microspora Thuret, 1850.

M. stagnorum (Kuetzing) Lagerheim, 1887.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Bahía Orange (Hariot 1889, p.

24, como Ulothrizx stagnorum Kuetzing), Patagonia (Borge 1901,

p. 11).

CYLINDROCAPSACEAE

Cylindrocapsa Reinsch, 1867.

C. conferta West, 1892.

Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos y en rocas en Cascada

de los Novios, Río Peulla (Thomasson 1963, p. 40).

Cylindrocapsa sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101):

ULVALES

ULVACEAE

Enteromorpha Link, 1820

E. bulbosa Mont.

Prov. Aconcagua, Zapallar, en lagunitas inmediatas al mar, en el

Pangue y en el Mar Bravo (Johow 1945, p. 22).

E. prolifera (Mueller) J. Agardh, 1883.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

Monostroma Thuret, 1854.

M. membranacea West et West

Prov. Santiago, Santiago, Hospital (Espinosa 1923, p. 94).

PRASIOLACEAE

Prasiola Agardh, 1821.

P. antarctica Kuetzing

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

P. tessellata Kuetzing

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Bahía Orange (Hariot 1889,

p. 29).

CHAETOPHORALES

CHAETOPHORACEAE

Chaetophora Schrank, 1789.

Ch. elegans (Roth) C.A. Agardh, 1812.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en «rocas sumergidas y en aguas co-

rrientes cerca del lago (Thomasson 1963, p. 24, fig. 39:12); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

Ch. pisiformis (Roth) Agardh, 1812.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 4, fig. F); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

Desmococcus Brand, 1925.

D. vulgaris Brand, 1925.

Prov. Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 93, como Pleurococcus

vulgaris Naegeli).

Draparnaldia Bory, 1808.

D. glomerata (Vaucher) Agardh forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

Draparnaldia sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

Microthamnion Naegeli, 1849.

M. kuetzingianum Naegeli in Kuetzing, 1849.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 11).

Stigeoclontum Kuetzing, 1843.

S. aestivale (Hazen) Collins, 1909.

Prov. Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 94).

S. amoenum Kuetzing, 1845.

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 94).

S. longiípilum Kuetzing emend. Nurul-Islam, 1963.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 4, fig. M, como

Stigeoclonium fastigiatum (Ralfs) Kuetzing).

S. lubricum (Dillwyn) Kuetzing, 1845.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 43, fig.

39:11).

S. tenue (Agardh) Kuetzing, 1843.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

Stigeoclonium sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

APHANOCHAETACEAE

Aphanochaete A. Braun, 1849.

A. repens A. Braun, 1851.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 73);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10).

CHAETOSPHAERIDIACEAE

Chaetosphaeridium Klebahn, 1892.

Ch. globosum (Nordstedt) Klebahn, 1893.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60);

P:ov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plencton (Thomasson 1963, p.

63, fig. 39:10); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 10), Tie-

rra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p. 23).

o A

COLEOCHAETACEAE

Coleochaete Brébisson, 1844.

orbicularis Pringsheim, 1860.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

scutata Brébisson, 1844.

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 94); Prov.

Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

TRENTEPOHLIALES

TRENTEPOHLIACEAE

Trentepohlia Martius, 1817.

aurea Linnaeus

Prov. Valparaíso, Isla Masatierra (Minster Stróm 1953, p. 88).

jolithus (Linnaeus) Wallroth, 1833.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 11).

polycarpa Nees et Montagne

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 94); Prov.

Magallanes, Tierra del Fuego, Isla Wollaston (Hariot 1889, p. 23).

OEDOGONIALES

OEDOGONIACEAE

Bulbochaete Agardh, 1817.

crenulata Pringsheim, 1858.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

rectangularis Wittrock, 1870.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

Bulbochaete sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, pozas (Thomasson 1963, p. 101).

Bulbochaete sp

Prov. aba Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

Bulbochaete sp.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

Bulbochaete sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

Oedogonium Link, 1820.

O. capilliforme Kuetzing, Wittrock, 1853, 1872.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

capilliforme var. australe Wittrock, 1886.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

ciliatum (Hassall) Pringsheim, 1856.

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 94).

crispum (Hassall) Wittrock, 1874.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

. fasciatum Kuetzing

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 4, fig. 1).

. Fragile Wittrock, 1870.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

. grande Kuetzing, Wittrock, 1845, 1833.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 4, fig. K, como

Oedogonium landsboroughiú (Hassal) Wittrock var. gemelliparum

(Pringsheim) Wittrock).

macrandrium Wittrock, 1870.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 4, fig. N).

. macrospermum West et West fma. patagonicum Hirn et Borge; Borge,

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

. nodulosum Wittrock, 1872.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

. pringsheimú Cramer, Wittrock, var. nordstedti Wittrock, 1877.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

. varians Wittrock et Lundell forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 8).

. undulatum (Brébisson) Braun; Wittrock, 1870.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue (Thomasson 1963, p. 63, fig. 39:

45).

undulatum forma Hirn, 1900.

Prov. Santiago, Santiago, El Volcán (Espinosa 1923, p. 94).

Oedogonium sp.

Prov. Aconcagua, Zapallar, El Cajón (Johow 1945, p. 21).

Oedogonium sp.

Prov. Valparaíso, Islas Masatierra, Masafuera e Isla de Pascua

(Munster Stróm 1953, p. 87).

Oedogonium sp.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

Oedogonium sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963,7p- 101):

Oedogonium

Prov.

Oedogonium

Prov.

Oedogonium

Prov.

Oedogonium

Prov.

Oedogonium

Prov.

Oedogonium

P:ov.

sp.

Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

sp.

Valdivia, Lago Ranco, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

sp.

Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

sp.

Chiloé, Castro (Espinosa 1917, pp. 56 y 83).

sp.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 9).

sp.

Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo, Isla Desolación,

Pto. Augusto (Borge 1906, p. 23).

Ch.

SIPHONOCLADALES

CLADOPHORACEAE

Chaetomorpha Kuetzing, 1845.

clavata (Agardh) Kuetzing

Prov.

Curicó,Dpto. Vichuquén, Paredones (Moore 1926, p. 388).

Rhizoclonium Kuetzing, 1843.

R. casparyi Harvey

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 44, lám. 4, fig. J).

R. hieroglyphicum (Agardh) Kuetzing

Prov. Valparaíso, Isla Masatierra (Minster Stróm 1953, p. 88).

Cladophora Kuetzing, 1843.

Cl. fracta (Dillwyn) Kuetzing

Prov. Valparaíso, Isla Masatierra (Miúnster Stróom 1953, p. 88).

Cl. glaucenscens (Griffith) Hoocker et Harvey, 1847.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Isla Hermita, Cabo de Hornos

(Hariot 1889, p. 20).

Cl. glomerata (Linnaeus) Kuetzing, 1843.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 4, fig. A); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 11).

Cl. rivularis (Linnaeus) Van den Hoek, 1963.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 4, fig. B y O).

Cladophora sp.

Prov. Valparaíso, Isla Masatierra (Miúnster Stróm 1953, p. 88).

Cladophora sp.

Prov. Curicó, Dpto. Vichuquén, Paredones (Moore

1926, p. 388).

mite

Cladophora sp.

Prov. Linares, Dpto. Cachapoal, Parral, Los Bronces (Espinosa 1924,

p. 88).

Cladophora sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 12).

ZYGNEMATALES

ZYGNEMATACEAE

Mougeotía C.A. Agardh, 1824.

scalaris Hassall, 1842.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 16).

Mougeotía sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. N).

Mougeotia sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas (Thomasson 1963, p. 101).

Mougeotia sp.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

Mougeotia sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 16).

Mougeotía sp.

Sp.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto, Tierra del Fuego,

Río Azopardo (Borge 1901, p. 24).

Spirogyra Link, 1820.

arcta (Agardh) Kuetzing, 1845.

Pr-ov. Santiago, Santiago (Solari, 1963, p. 45, lám. 2, fig. O).

bellis (Hassall) Cleve, 1868.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. D); Prov.

Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963,

p. 102).

calospora Cleve, 1868.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

catenaeformis (Hassall) Kuetzing, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. P, como

Sp. affinis (Hassall) Petit), Santiago (Espinosa 1923, p. 93); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 17).

condensata (Vaucher) Czurda, 1932.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45).

decimina (Mueller) Kuetzing, 1845.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig H), Santiago

(Espinosa 1923, p. 93).

Sp.

SD.

Sp.

SD.

Sp.

flavescens (Hassall) Kuetzing, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. O).

gracilis (Hassall) Kuetzing, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. B).

inaequalis Kuetzing

Prov.Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. L).

longata (Vaucher) Kuetzing, 1843.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. C); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 17).

neglecta (Hassall) Kuetzing, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. M).

nitida (Dillwyn) Link, 1820.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. K), Santia-

go (Espinosa 1923, p. 93); Prov. Curicó, Dpto. Vichuquén, Paredones

(Moore 1926, p. 388).

Sin localidad (Gay 1852, p. 386).

porticalis (Mueller) Petit, 1880, emend. Krieger

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 17).

quadrata (Hassall) Petit forma tenuior Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 17).

quinina Kuetzing, 1845.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. O).

rivularis Rabenhorst in Seckt, 1929.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. D).

setiformis (Roth) Kuetzing, 1845.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. R, como

Sp. jugalis (Dillwyn) Kuetzing).

stictica (Smith) Petit

Prov. Aconcagua, Zapallar, en el agua del Cajón y en el Pangue

(Johow 1945, p. 21).

submaxima Transeau, 1914.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

tenutor (Nordstedt) Kolkwitz et Krieger, 1941.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. P, como

Sirogonium sticticum Kuetzing), Santiago (Espinosa 1923, p. 93,

como Spirogyra stictita (Engl. Bot.) Wille).

tenuissima (Hassall) Kuetzing, 1849.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 17).

teodoresci Transeau, 1934.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 102).

Sp. ternata Ripart, 1876.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. M).

Sp. varians (Hassall) Kuetzing, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 93).

Sp. varians forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 17),

Spirogyra sp.

Prov. Valparaíso, Islas de Juan Fernández, en las inmediaciones del

desembarcadero de la Bahía Cumberland (Johow 1896, p. 203).

Spirogyra sp.

Prov. Valparaíso, Islas Masatierra, Masafuera e Isla de Pascua (Mins-

ter Stróm 1953, p. 87).

Spirogyra sp.

Prov. Valparaíso, Islas Masatierra, Masafuera e Isla de Pascua (Miins-

ter Stróm 1953, p. 87).

Spirogyra sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 6, fig. H).

Spirogyra sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 6, fig. C).

Spirogyra sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 5, fig. C).

Spirogyra sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 5, fig. L).

Spirogyra sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 5, fig. A).

Spirogyra sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 6, fig. A).

Spirogyra sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 5, fig. G).

Spirogyra sp.

Prov. Curicó, Dpto. Vichuquén, Paredones (Mcore 1926, p. 388).

Spirogyra sp.

Prov. Concepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y González 1973,

p. 56).

Spirogyra sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en rocas al lado del lago (Thomasson

1963, p. 23).

Spirogyra sp.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

Spirogyra sp.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

3 =

Spirogyra sp.

Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos y en rocas en Cascada

de los Novios (Thomasson 1963, p. 40).

Spirogyra sp.

Prov. Chiloé, Castro (Espinosa 1917, pp. 56 y 83).

Spirogyra sp.

Prov. Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, p. 198).

Zygnema Agardh, 1817.

Z. cruciatum (Vaucher) Agardh, 1824.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, £g. G).

Z. ericetorum (Kuetzing) Hansgirg, 1886.

P-ov. Magallanes, Putagonia (Borge 1901, p. 16, como Zygogonium

ericetorum Kuetzing), Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p.

24, como Zygogonium ericetorum Kuetzing var. terrestre Kirchner).

Z. insigne (Hassall) Kuetzing, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. F).

Z. tenue Kuetzing, 1845.

Prov. Santiago, santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. E, como

Zygnema stellinum var. tenue Rabenhorst).

Z. vaucherii Agardh, 1824.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Bahía Orange (Hariot 1889, p.

15%

Zygnema sp.

Prov. Valparaíso, Islas Masatierra y Masafuera, en arroyo (Miins-

ter Stróm 1953, p. 87).

Zygnema sp.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

Zygnema sp.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

Zygnema sp.

Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos y en rocas en Cascada

de los Novios, Río Peulla (Thomasson 1963, p. 40).

Zygnema sp.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 16).

MESOTAENIACEAE

Cylindrocystis Meneghini, 1838.

Cyl. brebissonii Meneghini, 1838.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 26, fig. 1); Prov.

Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 30).

Cyl.

crassa De Bary, 1858.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 26, fig. 2).

Gonatozygon De Bary, 1856

aculeatum Hastings, 1892.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Lo Méndez (Parra

1975, p. 27, figs. 7 y 8); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton

(Thomasson 1963, p. 56); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 68).

brebissoníúi De Bary, 1858.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 27, fig. 9).

kinahani (Archer) Rabenhorst, 1868.

Prov. Concepción, Río Bíc-Bío (Parra 1975, p. 27, fig. 10) .

monotaenium De Bary, 1856.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Río Bío-Bío, Arroyo Leonera, Laguna La Posada (Parra

1975, p. 27, figs. 14-16); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton

(Thomasson 1963 ,p. 56).

pilosum Wolle, 1882.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Farra 1975, p. 27, figs. 11-13).

Mesotaeninum Naegeli, 1849.

Mesotaenium sp.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. K).

Netrium (Naegeli) Itzsigsohn et Rothe, 1856.

digitus (Ehrenberg) Itzsigsohn et Rothe, 1856.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 26, fig. 3; Prov.

Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov.

Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963,

p. 101), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56); Prov.

Valdivia, Lago Calafquén y Lago Pellaifa, plancton (Thomasson

1963, p. 68); Prov. Osorno, Lago Bonita, plancton (Thomasson 1963,

p. 68).

digitus var. lamellosum (Brébisson) Groenblad, 1920.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

digitus var. rectum Krieger, 1933.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 26, fig. 5); Prov.

Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56, fig. 38:

16).

interruptum (Brébisson) Luetkemueller, 1902.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parral 1975, p. 26, fig. 5).

N. interruptum var. interruptum fma. minus (Borge) Kossinskaja, 1952.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 27, fig. 6).

Spirotaenia Brébisson, 1844.

Sp. minuta Thuret, 1856.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p.

29):

Sp. obscura Ralfs, 1848.

Prov. Magallanes, Tiezra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p.

29):

DESMIDIACEAE

Actinotaentum (Naegeli) Teiling, 1954.

A. capax (Joshua) Teiling var. minus (Schmidle) Teiling, 1954.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 64).

A. cucurbitum (Bisset) Teiling, 1954.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 35, fig. 80).

A. elongatum (Raciborski) Teiling, 1954.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 68,

fig: 88:18).

A. minutissimum (Nordstedt) Teiling, 1954.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 35, fig. 81).

Arthrodesmus Ehrenberg, 1838.

A. incus (Brébisson) Hassall, 1845.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Puerto Augusto (Borge 1906, p. 24).

A. octocornis Ehrenberg

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 13, fig. 31).

Bambusina Kuetzing, 1845.

B. brebissoni Kuetzing, 1845.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 50, fig. 172).

B. moniliformis (Ehrenberg) Thomasson

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 58,

fig. 38:20). :

Closteríium Nitzsch, 1817.

Cl. abruptum W. West, 1892.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

Cl. acerosum (Schrank) Ehrenberg, 1828.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. J), Santiago

(Espinosa 1923, p. 93); Prov. Concepción, Estero Lenga (Rivera, Pa-

rra y González 1973, p. 56, lám. 11, fig. 5), Río Andalién K. 10, La-

guna Pineda, Río Andalién puente 3, Arroyo Leonera y Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 28, fig. 11); Prov. Magallanes, Patagonia

(Borge 1901, p. 18).

Cl. acerosum var. elongatum Brébisson, 1856.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. D).

Cl.

CL.

Cl.

aciculare T. West, 1860.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Nava:ro y Avaria 1971, 299,

lám. II, fig. 1); Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La ak

(Parra 1975, p. 28, fig. 44); Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, planc-

ton (Thomasson 1955, p. 206), Lago Riñihue, plancton (Thomasson

1955, p. 203), Lago Calafquén (Thomasson 1963, p. 68); Prov. Maga-

llanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

acutum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 28, fig. 45), La-

guna Verde (Parra 1973, p. 13, figs. 32 y 33).

acutum var. variabile (Lemmermann) Krieger, 1937,

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 299,

lám. II, figs. 3 y 4); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Tho-

masson 1963, p. 68).

archerianum Cleve in Lundell, 1871.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10 (Parra 1975, p. 28, fig. 22);

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

calosporum Wittrock, 1869.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10 y Laguna Pineda (Parra 1975,

EL 20, 110. Za).

cynthia De Notaris, 1867.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, pozas cerca del lago (Thomasson 1963,

p. 101); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963,

p. 56); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p.

68).

cynthia var. jenneri (Ralís) Krieger, 1937.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto, como Cl. jenneri

Ralís (Borge 1906, p. 30).

delpontei (Klebs) Wolle, 1885.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 28, figs. 34 y 35).

dianae Ehrenberg, 1838.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Río Bío-Bío, Arroyo Leonera (Parra 1975, p. 29, figs. 26-31);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68);

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p. 30).

dianae var. brevis (Wittrock) Petkoff, 1910.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 19, como Closterium

excavatum Borge, 1901).

ehrenbergíí Meneghini, 1840.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Río Andalién pánte 3, Río

Bío-Bío, Arroyo Leonera, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 29, fig.

18); Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46

y en pozas cerca del lago, p. 101 y 102); Prov. Valdivia, Lago Pan-

guipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206); Prov. E Pa-

tagonia (Borge 1901, p. 20).

BÉ

Cl.

Cl,

Cl.

ehrenbergúi var. malinvernianum (De Notaris) Rabenhorst, 1868.

Prov. Concepción, Arroyo Leonera (Parra 1975, p. 29, figs. 19 y 20).

gracile Brébisson, 1839.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3 y Laguna Lo Méndez (Parra 1975, p. 29, fig. 43), Concep-

ción, en estadios larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus)

(Parra et al. 1974, p. 113); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton

(Thomasson 1963, p. 596); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901,

p. 18), Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 30).

kuetzingít Brébisson, 1856.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 29, figs. 38-40), Concepción, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus) (Parra et al. 1974, p. 113); Prov. Valdivia,

Lago Calafquén y Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 20).

lanceolatum Kuetzing, 1845.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 18).

leiblení Kuetzing, 1833.

Prov. Santiago, santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1; fig. E); Prov.

Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, p. 198), Pata-

gonia (Borge 1901, p. 19).

libellula Focke in Krieger, 1937.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 30, figs. 36 y 37); Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augus-

to y Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p. 30, como Penium

libellula Focke, 1847).

libellula var. intermedium (Roy et Bisset) G.S. West, 1914.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 30,

como Penium closterioides fma. minor Schmidle).

libellula var. interruptum (West et West) Donat, 1926.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

lineatum Ehrenberg, 1835.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 299,

lám. II, fig. 2); Prov. Concepción, Río Andalién puente 3 (Parra

97, Pp: 30, Mies: 32: y 33):

littorale Gay, 1884.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10 (Parra 1975, p. 30, fig. 42).

lunula (Mueller) Nitzsch, 1817.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 18).

macilentum Brébisson, 1856.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

malmei Borge, 1903.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

NA pu

Cl.

moniliferum (Bory) Ehrenberg, 1838.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. D); Prov.

Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién puen-

te 3, Río Bío-Bío, Arroyo Leonera (Parra 1975, p. 30, fig. 21), Con-

cepción, en estadios la:vales de Caudiverbera caudiverbera (Li-

nnaeus) (Parra et al. 1974, p. 113); Prov. Cautín, Lago Villarrica,

plancton y en pozas a orillas del lago (Thomasson 1963, pp. 46 y

102); Prov. Magallanes, Patagonia (Bcrge 1901, p. 20).

parvulum Naegeli, 1849.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 30, fig. 23); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 18), Tie-

rra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p. 30).

parvulum var. angustum West et West, 1900.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parza 1975, p. 30, fig. 24).

praelongum Brébisson, 1856.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 18).

pritchardianum Archer, 1862.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas a orillas del lago (Tho-

masson 1963, p. 102).

pronum Brébisson, 1856.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 31, fig. 41); Prov. Magallanes, Patagonia

(Borge 1901, p. 20).

pseudolunula Borge, 1909.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas (Thomasson 1963, p. 101).

ralfsíi Brébisson, 1845.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

ralfsíi var. inmane Cushman, 1908.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

rostratum kEhrenberg, 1832.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45).

setaceum Ehrenberg, 1834.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, en pozas (Thomasson 1963, p. 103).

striolatum HEhrenberg, 1832.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68);

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1506, p. 30).

striolatum var. borgei (Borge) Krieger, 1937.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 30,

como Closterium magellanicum Borge, 1901).

toron W. West, 1892.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

Cl.

tumidulum Gay, 1884.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 19).

tumidum Johnson, 1895.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901,p. 18).

turgidum Ehrenberg, 1838.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

PrSL, Mas: 46 :y147).

venus Kuetzing, 1845.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 102); Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thoma-

sson 1955, p. 206), Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 204),

Lago Pellaifa, plancton y pozas (Thomasson 1963, pp. 68 y 103);

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

68); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 19).

Cosmarium Corda, 1834.

amoenum Brébisson, 1848.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson

1963, p. 60).

. amoenum var mediolaeve Nordstedt, 1887.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p. 26).

. angulosum Brébisson var. concinnum (Rabenhorst) West et West, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 25, como C. concinnum

(Rabenhorst) Reinsch).

. QGraucantensis Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57); Prov. Valdivia,

Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 68), Lago Pellaifa,

plancton (Thomasson 1963, p. 60); Prov. Llanquihue, Lago Llanqui-

hue, plancton (Thomasson 1963, p. 64).

bioculatum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 2, fig. 1); Prov.

Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 36,

fig. 84).

bioculatum var. depressum (Schaarschmidt) Schmidle, 1894.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 36, fig. 85).

binum Nordstedt in West et West, 1902.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 36, fig. 116).

bipunctatum Boergesen, 1890.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 36, fig. 111).

bireme Nordstedt, 1869.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 36, fig. 98).

bireme var. huzeliíi Foerster, 1969.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 36, fig. 99.)

blyttii Wile, 1880.

Prov. Concepción, Río Andalién puente 3, Laguna La Posada (Pa-

mal95 ap. 37, Te 95).

blyttii var. novae-sylvae West et West, 1897.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

botrytis Meneghini, 1840.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 102), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Valdivia, Lago Calafquén y Lago Quilleihue, plancton (Tho-

masson 1963, p. 68); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p.

20), Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

botrytis var. depressum West et West, 1905.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifta, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

dbotrytis var. tumidum Wolle, 1884.

Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. €8).

calcareum Wittrock, 1872.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 26).

circulare Reinsch, 1867.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna Lo

Méndez (Parra 1975, p. 37, fig. 87).

circulare var. minus Hansgirg, 1888.

Prov. Concepción, Laguna Lo Méndez (Parra 1975, p. 37, fig. 88).

connatum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 37, fig. 121); Prov.

Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963,

p. 101); Prov. Valdivia, Lago Pellaifta, plancton (Thomasson 1963,

p. 68).

contractum Kirchner, 1878.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 32, tig. 83); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 24).

. contractum var. ellipsoideum (Elfving) West et West, 1902.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57,

fig. 38:95); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963,

p. 68); Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955,

p. 195).

conspersum Ralís var. subrotundatum West, 1892.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 21, como Cosmarium

latum Brébisson).

corumbense Borge forma Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 37,

fig.. 35:9).

crenatum Ralfs, 1844.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 22).

. Crenatum forma Nordstedt, 1872.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 23).

cucumis Corda ex Ralfs, 1834.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 23), Isla Desolación,

Pto. Augusto (Borge 1906, p. 27).

. Cucurbitum (Bisset) Luetkemueller var. magellanicum (Teiling) Krieger

[et Gerloff 1969.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 29,

fig. 7, como Pentium magellanicum Borge 1906).

denticulatum Borge var. perspinosum Grcenblad, 1944.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

depressum (Naegeli) Lundel, 1871.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 37, fig. 89).

. depressum var. achondrum (Boldt) West et West, 1905.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig. 38:2).

depressum var. circulare Krieger et Gerloff, 1962.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 38, fig. 90).

. depressum (Naegeli) Lundell var. planctonicum Reverdin, 1919.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57,

fig. 38:3, como C. subtumidum var. klebsíi (Gutwinski) West et

West); Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos, plancton (Thoma-

sson 1963, p. 69, como C. subtumidum var. klebsir); Prov. Maga-

llanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195, como

C. abbreviatum var. planctonicum West et West).

. dichondrum West et West, 1895.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3 (Parra 1975, p. 38, fig. 103).

. difficile Luetkemueller, 1892.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10 (Parra 1975, p. 38, fig. 96);

Prov. Cautín, Lago Villarrica, pozas (Thomasson 1963, p. 101).

difficile var. dilatatum Borge, 1925.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

. dusenú Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906,

p. 26):

dusenúi var. triquetrum Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p.

26, como Euastrum dusenú n. sp. var. triquetrum n. var.).

a ABR

elegantissimum Lundell fma. minor West, 1892.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson

1963, p. 60).

excentricum Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 25).

exiguum Archer, 1864.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 23).

formosulum Hoff in Nordstedt, 1888.

Prov. Concepción, Río Bío-Bío (Parra 1975, p. 38, fig. 117).

granatum Brébisson in Ralís, 1848.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

64); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 24), Tierra del Fue-

go, Río Azopardo (Borge 1906, p. 27).

globosum Bulnheim, 1861.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 27).

hammeri Reinsch, 1878.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 24).

humile (Gay) Nordstedt var. striatum (Boldt) Schmidle, 1895.

Prov. Valparaíso, Isla Masatierra (Munster Stróm 1953, p. 87); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 22).

humile var. substriatum (Nordstedt) Schmidle, 1895.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 22).

incisum Joshua fma. major Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 23).

intermedium bDelpin, 1877.

Prov. Santiago, Santiago (Sclari 1963, p. 45, lám. 1, fig. B).

isthmochondrum Nordstedt, 1873.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 38, fig. 102).

laeve Rabenhorst, 1868.

Prov.Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 93); Prov. Concepción,

Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién puente 3, Laguna

Lo Méndez, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 38, fig. 93); Prov.

Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963,

p. 102), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 69); Prov. Ma-

gallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 24, como Cosmarium leioder-

mum (Gay) Hansgirg).

laeve var. octangulare (Wille) West et West, 1908.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 39, fig. 94).

— «A

lobatum Boergesen var. minus (Smith) Groenblad, 1945.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 39, fig. 100).

lundellii Delpin var. ellipticum West et West, 1894.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 102).

. magnificum Nordstedt var. patagonicum Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 26, lám. 2, fig. 14).

melanosporum Archer, 1883.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 39, fig. 86).

meneghinú Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

minimum West et West, 1895.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 39, fig. 82).

monomazum Lundell var. polymazum Nordstedt, 1873.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 39, fig. 101).

montanum Schmidle var. pseudoregnesíi (West) Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 22).

moniliforme (Turpin) Ralfs, 1848.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

moniliforme var. panduriformis (Heimerl) Schmidle, 1895.

Prov. Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, p. 198,

como C. moniliforme (Turpin) Ralís fma. panduriformis Heimerl

1891).

. nitidulum De Notaris, 1867.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. F); Prov.

Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig.

38:12); Prov. Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963,

p. 69), Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 69). En los dos

últimos lagos como Cosmarium subtumidum Nordstedt var. klebsúi

(Gutw.) West et West, 1905.

obtusatum kSchmidle, 1898.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

P.439. Lig... 106):

ochthodes Nordstedt, 1875.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

_ochthodes var. amoebum West, 1892.

Prov. Concepción, Río Andalién puente 3, Laguna La Posada (Pa-

rra 1975, p. 39, fig. 106); Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton

(Thomasson 1963, p. 69); Prov. Osorno, Lago Bonita, plancton (Tho-

masson 1963, p. 69).

en TN

. ornatum Ralfs, 1844.

Prov. Concepción, Laguna La Posada, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 40, fig. 104), Concepción, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus) (Parra et al. 1974, p. 113).

. orthostichum Lundell var. pumilum Lundell, 1871.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 40, fig. 107).

. ovale Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 40, fig. 112).

. pachydermum Lundell, 1871.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 24), Tierra del Fuego,

Río Azopardo (Borge 1906, p. 27).

. parallelum Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 21).

. parvulum Brébisson, 1856.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. 1); Prov.

Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 27).

. phaseolus Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 37,

fig. 38:10); Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge

1906, p. 28).

. portianum Archer, 1860.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 40, fig. 108);

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60), La-

go Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

. portianum var. matus Scott et Prescott, 1958.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

. pseudanae Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p.

Ala)

. pseudobotrytis (Gay) Squinab. var. majus Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 21, lám. 2, fig. 11).

. pseudoconnatum Nordstedt, 1869.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 40, fig. 120); Prov. Arauco, Lago Lanalhue,

plancton (Thomasson 1961, p. 72); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en

pozas cerca del lago (Thomasson 1963, p. 101); Prov. Valdivia, La-

go Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

. pseudoprotuberans Kirchner, 1878.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

o TA

pseudoprotuberans forma Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46); Prov.

Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69); Prov.

Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69, fig.

38:13).

pseudopyramidatum hLundell, 1871.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 40, fig. 119); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del

lago (Thomasson 1963, p. 101).

pseudokirchneri Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 25, lám. 2, fig. 13).

pseudotinecense Groenblad, 1921.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 40, fig. 118).

punctulatum Brébisson, 1856.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. D); Prov.

Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 41, fig. 110); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del la-

go (Thomasson 1963, p. 101); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge

ISI” 21):

punctulatum var. subpunctulatum (Nordstedt) Borge, 1901.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 21).

vpyramidatum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57),

Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963, pp. 101

y 102; además en la p. 101 como C. pyramidatum Brébisson var.

transitorium (Heimerl) Irenée Marie); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa,

plancton (Thomasson 1963, pp. 60 y 69) y como C. pyramidatum

var. transitorium en el plancton del lago Calafquén (Thomasson

1963, p. 69).

. pyramidatum Brébisson fma. maxima Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 24).

pygmaeum Archer, 1864.

Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1901,

pPZT):

quadratum Ralís forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 23).

quadrifarium Lundel fma. major Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p.

27).

quadrifarium fma. octasticha Nordstedt, 1888.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 97,

fig. 35:8).

pe 7

. quadrum Lundell, 1871.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 41, fig. 109); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del

lago (Thomasson 1963, pp. 101 y 102).

. rectangulare Grunow forma Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57,

fig. 38:4).

. regnesti Reinsch, 1867.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 13, figs. 34 y 35);

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

. regnesi var. montanum Schmidle, 1895.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1969, p. 101).

. scorbiculosum Borge, 1903.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57,

tig. 398.7).

. speciosissimum Schmidle, 1895.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Anda-

lién puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 41, fig. 113).

. Speciosum Lundell var. rectangulare Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 21).

subarctoum (Lagerheim) Raciborski, 1892.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

. subcrenatum Hantzsch in Rabenhorst, 1861.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 23).

. subgranatum (Nordstedt) Luetkemueller, 1902.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 25, como C. meneghinú

Brébisson).

. subprotumidum Nordstedt, 1876.

Prov. Concepción, Ríc Andalién puente 3 (Parra 1975, p. 42, fig. 114).

. Subprotumidum íma. Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101, fig. 38:11).

. Subspeciosum Nordstedt, 1875.

Prov. Valparaíso, Isla Masatierra, entre musgos y rocas húmedas

en Pangal (Miúnster Stróm 1953, p. 86); Prov. Concepción, Río An-

dalién K. 10, Río Bío-Bío, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 41).

. Subspeciosum var. validius Nordstedt, 1887.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién,

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 41, fig. 115); Prov. Arau-

co, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov. Cautín,

Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963, p. 101),

Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig. 38:8); Prov.

Valdivia, Lago Pellaita, plancton y pozas (Thomasson 1963, pp. 60

y 103), Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69); Prov.

Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 64);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 26).

. subtumidum Nordstedt, 1878.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, py, 101):

. subtumidum var. borgei Krieger et Gerloff, 1965.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 42, fig. 91).

teilingi Thomasson, 1963.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thcmasson 1963, p.

64, fig. 35:2-5), Lago Todos los Santos, plancton (Thomasson 1963,

¡SS o O)

tetragonum (Naegeli) var. lundellii Cooke, 1887.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101, fig. 38:14).

tetraophthalmum Brébisson, 1848.

Prov. Santiago, Santiago (Sclari 1963, p. 45, lám. 1, fig. ]J).

tetraophthalmum var. patagonicum Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia(Bozge 1901, p. 20, lám. 2, fig. 10).

. tinctum Ralfs, 1848.

Prov. Mugallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 25).

. tinctum var. intermedium Nordstedt, 1887.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

. trilobulatum Reinsch, 1867.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

. trilobulatum var. bioculatum Krieger, 1932.

Prov. Concepción Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 42, fig. 97).

. turgidum Brébisson var. minor (Reinsch) Schmidle, 1895.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 23, lám. 2, fig. 12).

. venustum (Brébisson) Archer var. minus (Wille)

Krieger et Gerloff, 1965.

Prov. Concepción Río Bío-Bío (Parra 1975, p. 42, fig. 92).

. wittrockú Lundell, 1871.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 21, como C. wittrockú

var. schmidlei Borge).

Cosmartum sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 300,

lSm. 4. ios 7),

Cosmarium sp.

Prov. Concepción, Estero Lenga (Rivera, Parra y González 1973,

D90, 14m. 10. fo. 6),

Cosmarium sp.

Prov. Concepción, Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios

larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus).

Cosmarium sp.

Prov. Chiloé, Castro (Espinosa 1917, pp. 56 y 83).

Cosmarium sp.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1975, p. 195).

Cosmarium sp.

Prov. Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, p. 198).

Desmidium Agardh, 1824.

D. baileyi (Ralís) De Bary, 1858.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 51, fig. 178).

D. bdaileyi var. baileyi fma. tetragonum Nordstedt, 1888.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 51, fig. 179).

D. cylindricum Greville, 1827.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

paul, ug: 177)

D. swartzi Agardh, 1812.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 52, fig. 176); Concep-

ción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas

cerca del lago (Thomasson 1963, p. 101); Prov. Valdivia, Lago Pe-

llaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

Euastrum Ehrenberg, 1832.

E. abruptum Nordstedt var. subglaziowii (Borge) Krieger, 1937.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 32, figs. 54 y 55).

E. acanthophorum Turner, 1892.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 32, fig. 63).

E. affine Ralís, 1844.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

E. ansatum Ehrenberg, 1832.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 32, fig. 68); Prov. Cau-

tín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig. 37:9).

= Az

ansatum var. attenuatum Schmidle, 1896.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

attenuatum Wolle, 1881.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27, como Euastrum

pectinatum Brébisson var. porrectum Borge, 1901).

attenuatum var. lithuanicum Woloszynska, 1919.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 64,

fig. 37:13).

bidentatum Naegeli, 1849.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 32 figs0b y 157):

binale (Turpin) Ehrenberg, 1841.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 26).

binale (Turpin) Ehrenberg forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27).

binale (Turpin) var. parallelum Hirano, 1959.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10 (Parra 1975, p. 33, fig. 66).

cuneatum Jenner var. robustum Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 25).

denticulatum (Kirchner) Gay, 1884.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 33, fig. 62); Prow, Ma-

gallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto, Tierra del Fuego, Río Azo-

pardo (Borge 1906, p. 26).

didelta Ralís, 1844.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parza 1975, p. 33, fig. 64).

dubium Naegeli, 1849.

Prov. Concepción, Río Andalién puente 3 (Parra 1975, p. 33, fig. 61);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

dubium var. ornatum Woloszynska, 1919.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

elegans (Brébisson) Kuetzing, 1845.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p: 83,“ g:"65).

evolutum (Nordstedt) West et West, 1896.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 33, fig. 58).

evolutum var. glaziowú (Borge) West et West, 1897.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 33, fig. 59).

evolutum var. integrius West et West, 1896.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103, fig.

37:11 y 12), Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

A do

evolutum var. perornatum Scott et Croasdale, 1965.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 34, fig. 60).

. Gemmatum Brébisson in Ralfs, 1844.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3 (Parra 1975, p. 34, fig. 72).

humberti Bourrelly et Leboine, 1844.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 34, fig. 67).

. tnerme (Ralfs) Lundell var. glabrum Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1206, Ps 20).

. insulare (Wittrock) Roy var. silesiacum Groenblad, 1926.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, Pp. 37).

. Johnsonnii West et West, 1897.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 34, fig. 69).

oblongum (Greville) Ralfs, 1844.

Prov. Concepción, Río Bío-Bío (Pa:ra 1975, p. 34, figs. 70 y 71).

. pinnatum Ralfs, 1848.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, pozas (Thomasson 1963, p. 101).

. Spinulosum Delponte, 1876.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3 (Parra 1975, p. 34, fig. 73).

subamoenum kSchmidle, 1893.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27).

turneri W. West, 1893.

Prov. Cautín, Lago Viliarrica, pozas (Thomasson 1963, p. 101), Lago

Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57); Prov. Valdivia, La-

go Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

validum West et West var. glabrum Krieger, 1937.

Prov. Concepción, Río Bío-Bío (Parra 1975, p. 34, figs. 74-76).

Euastrum sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarzo y Avaria 1971, p. 299,

lm. Es tc. 139: dám.1V.; a... 1).

Hyalotheca Ehrenberg, 1841.

H. dissiliens (Smith) Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 50, fig. 169), Concep-

ción (Parra et al. 1974, p. 113, en estadios larvales de Caudiverbera

caudiverbera (Linnaeus); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas

cerca del lago (Thomasson 1963, p. 102), Lago Pichilafquén, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 58); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton

y pozas (Thomasson 1963, pp. 70 y 103), Lago Quilleihue, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 70); Prov. Osorno, Lago Bonita, plancton

(Thomasson 1963, p. 70); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, planc-

2 PE

ton (Thomasson 1963, p. 64); Prov. Magallanes, Lago Roca; plancton

(Thomasson 1955, p. 198).

dissiliens var. hians Wolle, 1887.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 50, fig. 170).

mucosa (Mertens) Ehrenberg, 1840.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 50, fig. 171); Prov.

Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov.

Llanquihue, Lago Llanquihue (Thomasson 1963, p. 70); Prov. Maga-

llanes, Patagonia (Borge 1901, p. 17).

Micrasterias Agardh, 1827.

crurmelitensis (Ehrenberg) Hassall, 1845.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60, fig.

37:3).

denticulata Brébisson, 1835.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 35, fig. 77); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa,

plancton (Thomasson 1963, p. 68).

radians Turner, 1892.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, en plancton y pozas (Thomasson 1963,

pp. 60 y 103).

. radians var. bogoriensis (Bernard) G.S. West, 1909.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

. radiata Hassall, 1845.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 37).

. radiosa Ralís var. ornata Nordstedt fma. elegantior West, 1914.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 35, fig. 78); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson

1963, p. 57, fig. 37:7-8 como M. sol (Ehrenberg) Kuetzing var. ele-

gantior (West) Groenblad y como M. sol var. ornata Nordsteat).

. rotata (Greville) Ralís, 1844.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 97,

fig. 37:1); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963,

p. 60); Prov. Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge

1906, p. 24).

tetraptera West var. longesinuata

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton y pozas (Thomasson 1963,

pp. 68 y 103).

truncata (Corda) Brébisson in Ralís, 1848.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 35, fig. 79); Prov. Arau-

co, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov. Cautín,

Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson 1963, p. 101);

Prov. Valdivia, Lago Fellaifa, plancton y pozas (Thomasson 1963,

pp. 60 y 103), Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

Penium Brébisson, 1844.

P. margaritaceum (Ehrenberg) Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. N); Prov.

Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov.

Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56); Prov.

Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 68).

P. navicula Brébisson forma Borge, 1906.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 29).

P. spirostriolatum Barker, 1869.

Prov. Cautín, Lago Fichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 56).

Pleurotaenium Naegeli, 1849.

P. ehrenbergú (Brébisson) De Bary, 1858.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 31, fig. 51); Prov. Cau-

tín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig. 38:19);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103); Prov.

Llanquihue, Lago Llanquihue (Thomasson 1963, p. 68).

P. ehrenbergíi (Brébisson) De Bary forma Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 20).

P. ehrenbergíi var. undulatum Schaarschmidt, 1884.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 31, fig. 52); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson

1963, p. 60).

P. coronatum (Brébisson) Rabenhorst, 1868.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

P. ovatum Nordstedt, 1877.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 31, fig. 48).

P. trabecula (Ehrenberg) Naegeli, 1849.

Prov. Santiago, Santiago (Espinosa 1923, p. 93, como Pleurotaentum

maximum (Reinsch) Lundell); Prov. Concepción, Río Andalién K. 10,

Laguna Pineda, Río Andalién puente 3, Laguna La Posada (Parra

1975, p. 31, fig. 49), Concepción (Parra et al. 1974, p. 113, en esta-

dios larvales de Caudiverbera caudiverbera (Linnaeus); Prov. Arau-

co, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72); Prov. Cautín,

Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57); Prov. Valdivia

Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60); Prov. Llanquihue,

Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 63).

P. trabecula var. rectum (Delpin) West et West, 1904.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 32, fig. 50).

P. truncatum (Brébisson) Naegeli, 1849.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 19705,

pz, 16.. 03).

Pleurotaentum sp.

Sph.

Sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 299,

la; ies. 5:46).

Sphaerozosma Corda, 1834.

aubertianum West, 1889.

Prov. Concepción, Laguna Chica San Pedro, plancton (Thomasson

1963, p. 71), Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1976, p. 51,

fig. 174); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963,

p. 98); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson

1963, p. 64).

aubertianum var. archeri (Gutwinski) West et West, 1896.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 64).

excavatum Ralís var. subquadratum West et Carter, 1923.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

laeve Nordstedt, 1870.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 51, fig. 173).

vertebratum (Brébisson) Ralfs, 1848.

Prov. Magallanes, Fatagonia (Borge 1901, p. 17).

Spondylosium Brébisson, 1844.

panduriforme (Heimerl) Teiling fma. limneticum (West et West)

Teiling, 1957.

Sp.

St.

Sí.

St.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 58).

planum (Wolle) West et West, 1912.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 58);

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 202).

Staurastrum Meyen, 1829.

aculeatum (Ehrenberg) Meneghini, 1840.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 28).

alternans Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parza 1975, p. 44, fig. 139);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103, figs.

41:19 y 20).

anatinum Cooke et Wills fma. denticulatum

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, figs. 41:3 y 4).

anatinum var. subfloriferum Thomasson, 1963.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

69, figs. 41:14).

arachne Ralís var. curvatum West et West, 19093.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 204).

St.

SE.

St.

arcuatum Nordstedt fma. Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Pichilalguén, plancten (Thomasson 1963, pp. 58

y 108, figs. 42:12 y 13).

armigerum Brébisson var. furcigerum (Brébisson) Teiling

Prov. Concepción, Laguna Chica San Pedro, plancton (fhomasson

1963, p. 71); Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963,

p. 46), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson1963, p. 57, fig. 42:17),

Lago Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 69); Prov. Valdivia,

Lago Pellaifa, plancton, pozas (Thomasson 1963, pp. 60 y 103).

aspinosum Wolle fma. Thomasson, 1963.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69,

figs. 42:21 y 22).

asterias Nygaard in Krieger, 1932.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Pa:ra 1975,

p. 44, fig. 156); Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson

1963, p. 46), Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57,

figs. 42:14 y 10).

asterioideum West et West var. nanum (Wille) Groenblad, 1948.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 45, fig. 149).

avicula Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 45, fig. 154).

avicula Brébisson fma. Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46, figs.

42:7 y 8).

avicula var. subarcuatum (Wolle) West et West, 1894.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 45, fig. 153).

bibrachiatum Reinsch, 1867.

Prov. Valdivia, Lage Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

bidentulum Nordstedt fma. maior Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villar:ica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, pp. 101 y 114, fig. 41:16).

bienneanum Rabenhorst, 1862.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 45, fig. 136).

brachiatum Ralfs, 1845.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomassen 1963, p. 57, fig. 41:9).

brebissonúi Archer, 1861.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 28).

brebissonii var. maximum Cedercreutz, 1932.

Prov. Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

GUA

St.

St,

St.

Sí

St.

brevispinum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Río Andalién puente 3 (Parra 1975,

p. 45, fig. 131); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27).

chaetopus Hinode, 1967.

Prov. Concepción, Laguna Lo Méndez (Parra 1975, p. 45, fig. 160).

cingulum (West et West) Smith var. obesum G.M. Smith, 1922.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

cingulum var. ornatum Irénée-Marie, 1949.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

corpulentum Thomasson, 1955.

Prov. Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, pp. 198

y 218).

crenulatum (Naegeli) Delpin, 1877.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 13, fig. 36).

denticulatum (Naegeli) Archer, 1861.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

dilatatum HEhrenberg in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 46, fig. 142); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa,

plancton (Thomasson 1963, p. 60).

dilatatum fma. Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963/9101: 89s 411757 18):

dispar Brébisson fma. West et West, 1911.

Prov. Cautín, Lago Villar:ica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1908, p: 101).

. disputatum West et West var. extensum (Borge) West et West, 1911.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 46, fig. 138).

echinatum Brébisson, 1848.

Prov. Santiago, Santiago (Solari 1963, p. 45, lám. 1, fig. G).

excavatum West et West var. minimum Bernard, 1908.

Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206),

Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, pp. 203 y 220); Prov. Llan-

quihue, Lago Llanquihue (Thomasson 1963, p. 69).

furcatum (Ehrenberg) Brébisson, 1856.

Prov. Valdivia, Lago Pellaita, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

furcigerum Brébisson in Meneghini, 1840.

Prov. Concepción, Laguna Pineda y Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 46, fig. 155); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 28),

Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, p. 198).

St.

So.

St.

galpinti Claasen, 1956 in Thomasson, 1960.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

gladiosum Turner in West, West et Carter, 1923.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 46, fig. 143); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa,

plancton (Thomasson 1963, pp. 60 y 103).

gracile Ralfs, 1845.

Prov. Concepción, Río Bío-Bío (Parra 1975, p. 46, fig. 159).

grande Bulnheim var. parvum West fma. Thomasson, 1963.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

69).

grande var. rotundatum West et West, 1896.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57,

fig. 41:21).

hexacerum (Ehrenberg) Wittrock, 1872.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 28, como St. tricorne

(Brébisson) Meneghini).

10tanum Wolle, 1884.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 14); Prov. Valdi

via, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

irregulare West, 1894.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 14, fig. 37).

¿iversentí Nygaard, 1949.

P-ov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 14, fig. 38).

iversentii var. americanum Scott et Groenblad, 1957.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 14, fig. 39).

johnson West et West, 1894.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 300,

Tam: 1 Das. 8 y 0 dam. 1.) Go Ze

laeve Ralís, 1848.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 46, fig. 164); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson

1963, p. 57, fig. 42:2).

leptacanthum Nordstedt in West, 1898.

Prov. Concepción, Río Bío-Bío, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 46,

fig. 169):

leptocladum Nordstedt in Wolle, 1881.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarzo y Avaria 1971, p. 300,

lám. IL fig. 11); Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 14,

fig. 40), Río Bío-Bío (Parra 1975, p. 47, fig. 163).

leptocladum var. cornutum Wille, 1884.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig. 42:18).

a EA

St.

SE.

St.

Si.

St.

SÚ:

St.

longipes (Nordstedt) Teiling, 1946.

Prov. Concepción, Laguna Lo Méndez (Parra 1975, p. 47, fig. 161).

longipes var. evolutum (West et West) Thomasson, 1955.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, pp. 204 y

220).

longiradiatum West et West, 1896.

Prov. Concepción, Estero Lenga (Rivera, Pa:ra y González 1973, p.

96, Mám.1il, ias 5 y 0).

manfeldtii Delpin var. annulatum West et West, 1902.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 47, fig. 162).

megacanthum Lundell fma. Borge 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 28).

muticum Brébisson, 1840.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 47, fig. 133); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60); Prov.

Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69);

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27).

nuduliferum Groenblad fma. Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

orbiculare Ralfs in West et West, 1911.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 47, fig. 134); Prov.

Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27).

orbiculare var. depressum Roy et Bisset, 1886.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 47, fig. 135).

oxyacantha Archer var. patagonicum Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 28).

paradoxum Meyen, 1828.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 301,

lám. IV, figs. 4 y 5); Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Tho-

masson 1955, p. 206), Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p.

203); Prov. Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 1955, p.

198), Patagonia (Borge 1901, p. 28).

paradoxum var. parvum West, 1892.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

perundulatum Groenblad, 1920.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

pingue Teiling, 1942.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46);

Prov. Valdivia, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

pingue var. tridentata

Prov. Valdivia, Lago Calafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

St.

SE.

St.

pinnatum Turner var. reductum Krieger, 1932.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 48, fig. 148).

planctonicum Teiling fma. Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

polymorphum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 15, figs. 41 y 42),

Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Bío-Bío, Laguna La Posada

(Parra 1975, p. 48, fig. 150); Prov. Magallanes, Patagonia (Borge

1901, p. 28).

polymorphum var. cinctum Messikormmer

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

p; 28119. 151).

proboscideum (Brébisson) Archer, 1861.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60. fig.

42:1).

proboscideum (Brébisson) Archer fma. Thomasson, 1963.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101, fig. 42:9).

pseudosebaldir Wile fma. Thomasson, 1959.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46).

punctulatum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10 (Parra 1975, p. 48, fig. 140);

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101), Lago Huilipilún, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

punctulatum íma. Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 28).

quadrangulare Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda (Parra 1975,

p. 48, fig. 145).

quadrangulare var. contectum (Turner) Groenblad, 1945.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10 (Parra 1975, p. 48, fig. 146);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton, pozas (Thomasson 1963, pp.

60 y 103, figs. 41:7 y 8).

rectangulare Borge fma. minor Fritsch

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

rotula Nordstedt, 1870.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 48, figs. 166 y 167).

rotula var. smithii (Smith) Thomasson

Prov. Concepción, Laguna Chica San Pedro, plancton (Thomasson

1963, p. 71); Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del: lago:

(Thomasson 1963, p. 102, figs. 41:5 y 60), Lago Pichilafquén, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 57); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton

— 8 —

St.

(Thomasson 1963, p. 69), Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963,

p. 69); Prov. Osorno, Lago Rupanco y Lago Bonita, plancton (Tho-

masson 1963, p. 69); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton

(Thomasson 1963, p. 64), Lago Todos los Santos, plancton (Thoma-

sson 1963, p. 69).

santessoni Thomasson, 1955.

Prov. Valdivia, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, pp.

206 y 220).

sebaldiíú% Reinsch var. ornatum Nordstedt, 1873.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

sebaldi var. ornatum fma. planctonica (Luetkemueller) Teiling, 1947.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 47), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, pp. 57 y 118, figs. 40:10

y 42:19; Prov. Valdivia, Lago Calafquén y Lago Pellaifa, lansien

(Thomasson 1963, p. 69).

sebaldiíi var. brasiliense Boergesen ña

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, pp

209 y 218, figs. 2:3-6).

setigerum Cleve, 1864.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 49, fig. 144); Prov.

Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

sexcostatum Brébisson var. productum West, 1892.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 49, fig. 152).

smith Teiling

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 15, fig. 43); Prov.

Valdivia, Lago Calafquén (Thomasson 1963, p. 69); Prov. Llanqui-

hue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 64).

spongiosum Brébisson in Ralfs, 1848.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Pa:ra 1975, p. 49, fig.” 168). -

striolatum (Naegeli) Archer, 1861.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 49, fig. 141);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 69); Prov.

Magallanes, Tierra del Fuego, Río Azopardo (Borge 1906, p. 28).

striolatum íma. minor Borge, 1901.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27).

subavicula West et West var. tyrolense ' Schmidle Í

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton, pozas (Thomasson 1963, pp.

60 y 103, figs. 42:3-5). as

subgrande var. converum Scott et Prescott, 1958.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, pp.

69 y 120, figs. 38:6).

St.

suborbiculare West et West, 1896.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, en pozas cerca del lago (Thomasson

1963, p. 101).

subpolymorphum Borge

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103, figs.

42:10 y 11).

tetracerum Ralís, 1845.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 301,

lám. II, fig. 14); Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 15,

figs. 44 y 45), Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Río Bío-Bío, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 49, fig 158);

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 47),: La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57); Prov. Valdivia,

Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103); Prov. Magallanes,

Patagonia (Borge 1901, p. 28). uo C

tetracerum var. biverruciferum Groenblad, 1921.

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 15, fig. 46).

tetracerum var. evolutum West et West, 1905.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 47); Prov.

Osorno, Lago Rupanco (Thomasson 1963, p. 69); Prov. Llanquihue,

Lago Llanquihue y Todos los Santos (Thomasson 1963, p. 69).

tetracerum íma. trigona Lundell, 1871. :

Prov. Concepción, Laguna Verde (Parra 1973, p. 15); Prov. Valdi-

via, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60).

tohopekaligense Wolle, 1885.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

tohopekaligense var. brevispinum G.M. Smith in Irénée-Moarie, 1939.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

trifidum Nordstedt var. inflexum West et West, 1896.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La o (Parra 1975,

p. 49, fig. 147).

urinator Smith var. brasiliense Groenblad, 1945.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 47, fig:

42:20).

valdivianum Thomasson

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. ps

”

valdiviense Thomasson,, 1955.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomassór 1963, p. 47); Pa

Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 59), Lago Ca-

lafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 59), Lago Panguipulli, planc-

ton (Thomasson 1955, p. 206), Lago Rinihue, plancton (Thomasson

1955, p. 203); Prov. Llanquihue, Lago Todos los Santos, DOS

(Thomasson 1963, p. 69, fig. 42:16).

e E) co

St. vestitum Ralís, 1848.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

pul. EST

Staurastrum sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 300,

lám. IL, fig. 10; lám. IV, fig. 3).

Staurastrum sp.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 300,

lám. I, fig. 11).

Staurastrum sp.

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72).

Staurastrum sp.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén (Thomasson 1963, p. 58, fig. 42:6).

Staurastrum sp.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, pp. 60 y

125, fig. 42:6).

Staurastrum sp.

Prov. Llanquihue, Lago Quilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

Staurodesmus Teiling, 1948.

Std. convergens (Ehrenberg) Teiling, 1948.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 43, fig. 123); Prov.

Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46, fig. 34:14),

Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig. 34:12); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, pozas y plancton (Thomasson 1963, p. 103).

Std. convergens var. maximum fac. dickiei (Ralfs) Thomasson, 1955.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

Std. convergens Íma. Scott et Groenblad, 1957.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

Std. crassus (West) Florin, 1957.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

Std. curvatus (Turner) Thomasson, 1957.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57);

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 205);

Prov. Magallanes, Lago Fagnano (Thomasson 1955, p. 195).

Std. cuspidatus (Brébisson) Teiling, 1948.

Prov. Valparaíso, Lago Peñuelas (Navarro y Avaria 1971, p. 300,

lám. II, fig. 13); Prov. Concepción, Laguna Pineda, Río Bío-Bío (Pa-

rra 1975, p. 43, fig. 125), Laguna Chica San Pedro, plancton (Tho-

masson 1963, p. 71); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Tho-

masson 1963, p. 57); Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton

(Thomasson 1963, p. 64).

Std.

cuspidatus var. acuminatus (Nygaard) Florin

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p.

69, figs. 34:5 y 6).

cuspidatus var. divergens Nordstedt, 1870.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 28).

cuspidatus var. maximum West fac. tricuspidatus (Brébisson) Teiling

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

cuspidatus fac. tricuspidatus (Brébisson) Teiling.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203), La-

go Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206).

dejectus (Brébisson) Teiling, 1954.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Laguna La

Posada (Parra 1975, p. 43, fig. 131); Prov. Cautín, Lago Pichilafquén,

plancton (Thomasson 1963, p. 57); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, planc-

ton, pozas (Thomasson 1963, pp. 60 y 103).

dejectus var. patens Nordstedt, 1887.

Prov. Magallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27, lám. 2, fig. 11).

dickier (Ralfs) Lillieroth, 1950.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 43, figs::126 y 127); Prov.

Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103); Prov. Ma-

gallanes, Patagonia (Borge 1901, p. 27).

dickier fma. Thomasson, 1963.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 60, fig.

34:4).

dickiei var. maximus (West et West) Thomasson, 1963.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa (Thomasson 1963, p. 69).

dickier var. rhomboideus (West et West) Lillieroth, 1950.

Prov. Cautín, Lago Villarrica, plancton (Thomasson 1963, p. 46), La-

go Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57, fig. 34:10).

extensus (Borge) Teiling, 1967.

Prov. Concepción, Laguna Pineda (Parra 1975, p. 43, fig. 124).

extensus var. joshuae (Gutwinski) Teiling, 1967.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57

como Std. joshuae fac. joshuae); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, po-

zas (Thomasson 1963, p. 103 como Std. joshuae (Gutwinski) Teiling

y como Std. joshuae var. extensus); Prov. Magallanes, Lago Fag-

nano, plancton (Thomasson 1955, p. 195 como Std. joshuae var.

longispinus Thomasson).

mamillatus (Nordstedt) Teiling, 1967.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 44, fig. 128).

2 E

Std.

Did.

SV.

Std.

megacanthus (Lundell) Thunmark, 1948.

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

patens (Nordstedt) Croasdale, 1957.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 44, fig. 132);

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69,

fig. 34:9).

phimus (Turner) Thomasson, 1959.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103, fig.

34:11).

sellatus Teiling fma. brevispina Thomasson

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 205);

Prov. Magallanes, Lago Roca, plancton (Thomasson 19553, p. 198).

subulatus (Kuetzing) Thomasson

Prov. Concepción, Arroyo Leonera (Parra 1975, p. 44, fig. 130), La-

guna Chica San Pedro, plancton (Thomasson 1963, p. 711); P:ov. Cau-

tín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 97, fig. 34:7);

Prov. Valdivia, Lago Ouilleihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69);

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue, plancton (Thomasson 1963, p. 69).

triangularis (Lagerheim) Teiling, 1948.

Prov. Concepción, Laguna La Posada (Parra 1975, p. 44, fig. 129);

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57

como Sid. triangularis var. convergens 'Thomasson, 1959).

triangularis var. subparalellus (G.M. Smith) Thomasson

Prov. Arauco, Lago Lanalhue, plancton (Thomasson 1963, p. 72);

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

triangularis var. limneticus Teiling, 1967.

Prov. Cautín, Lago Pichilalquén, plancton (Thomasson 1963, p. 67);

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, plancton (Thomasson 1963, p. 69), La-

go Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206), Lago Riñihue,

plancton (Thomasson 1955, p. 204). En todos los lagos citados, como

Std. triangularis fma. curvispina Thomasson.

triangularis fac. janus Teiling, 1948.

Prov. Valdivia, Lago Riñihue, plancton (Thomasson 1955, p. 203);

Prov. Magallanes, Lago Fagnáno, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

triangularis fac. triangularis Teiling, 1948.

Prov. Cautín, Lago Pichilafquén, plancton (Thomasson 1963, p. 57).

triangularis fac. stroemú Teiling, 1948.

Prov. Cautín, Lago Panguipulli, plancton (Thomasson 1955, p. 206);

Prov. Magallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195).

Teilingia Bourrelly, 1964,

T. granulata (Roy et Bisset) Bourrelly, 1964.

Prov. Concepción, Laguna Pineda, Laguna La Posada (Parra 1975,

p. 50, fig. 175); Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963,

p. 103, como Sphaerozosma granulatum Roy et Bisset); Prov. Ma:

gallanes, Lago Fagnano, plancton (Thomasson 1955, p. 195, como

Sphaerozosma granulatum Roy et Bisset), Lago Roca, plancton (Tho-

masson 1955, p. 198, como Sphaerozosma granulatum Roy et Bisset),

Patagonia (Borge 1901, p. 17, como Sphaerozosma granulatum Roy

et Bisset, 1886).

Tetmemorus Ralfís, 1844.

T brebissonit (Meneghini) Ralfs, 1844.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 29).

T brebissoní (Meneghini) Ralís var. attenuatus Nordstedt

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 29).

T granulatus (Brébisson) Ralfs, 1844.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 28).

T laevis (Kuetzing) Ralfs, 1844.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 29).

Xanthidium Ehrenberg, 1837.

X. antilopaeum (Brébisson) Kuetzing, 1848.

Prov. Concepción, Río Andalién K. 10, Laguna Pineda, Río Andalién

puente 3, Río Bío-Bío (Parra 1975, p. 42, fig. 122), Laguna Chica San

Pedro (Thomasson 1963, p. 71); Prov. Cautín, Lago Villarrica, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 46, figs. 34:15-17), Lago Pichilafquén, planc-

ton (Thomasson 1963, p. 57); Prov. Valdivia, Lago Calafquén (Tho-

masson 1963, p. 69), Lago Pellaifa, plancton, pozas (Thomasson

1963, pp. 60 y 103), Lago Quilleihue (Thomasson 1963, p. 69).

X. dilatatum Nordstedt

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 24).

X. smithi Archer, 1860.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 25).

X. smith var. variabile Nordstedt, 1887.

Prov. Magallanes, Isla Desolación, Pto. Augusto (Borge 1906, p. 25).

X. variabile (Nordstedt) West et West, 1900.

Prov. Valdivia, Lago Pellaifa, pozas (Thomasson 1963, p. 103).

CHAROPHYCEAE

CHARALES

CHARACEAE

Chara Linneo ex Vaillant, 1719.

Ch. coronata Ziz, 1814.

Prov. Concepción, Coelemu (Espinosa 1923, p. 95).

nn,

Ch. foetida A. Braun tma. longibracteata A. Braun, 1834.

Prov. Valparaíso, San Antonio (Espinosa 1923, p. 95).

Ch. fragilis Desvaux, 1810.

Prov. Aconcagua, Zapallar, estero de Catapilco (Johow 1945, p. 24);

Prov. Concepción, Coelemu (Espinosa 1923, p. 95).

Ch. fragilis Desvaux fma. microptila normalis Migula

Prov. Santiago, Malvilla (Espinosa 1923, p. 95).

Ch. intermedia A. Braun, 1836.

Chile. Sin localidad (Robinson 1906, p. 267).

Nitella Agardh, 1824.

N. clavata (Bert) A. Braun

Prov. Santiago, Quinta Normal (Espinosa 1923, p. 95); Prov. Curicó,

Dpto. Vichuquén, Querelema (Espinosa 1.c.), Dpto. Vichuquén, Pa-

redones (Moore 1926, p. 389).

N. clavata Kuetzing

Chile. Sin localidad. Braun 1839, p. 311; Gay 1854, p. 551; Philippi

1860, p. 56; H.J. Gorves 1911, p. 33; Espinosa 1923, p. 95; Moore

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N. flexilis (Linneo ex parte) Agardh var. chilensis A. Braun

Prov. Valdivia, Valdivia (Kuetzing 1849, p. 514; Wallman 1853, p.

38; Braun 1882, p. 34; Nordstedt 1889, p. 7).

N. lechleri (Braun) Horn af Rantzien

Chile. Sin localidad. Braun 1882, p. 89 Nordstedt 1889, p. 14; Horn

af Rantzien 1950, p. 205.

Nitella sp.

Prov. Llanquihue, Lago Llanquihue (Thomasson 1963, p. 37).

Nitella sp.

Prov. Curicó, Dpto. Vichuguén, Querelema (Espinosa 1923, p. 95).

Nitella sp.

Prov. Cautín, Dpto. Lautaro. Laguna San Pedro (Espinosa 1923, p. 95).

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vols. land 2. Bethlehem, Pa. p. 1-365.

AGRADECIMIENTOS

Deseamos expresar nuestra gratitud hacia el Prof. Dr. P. Bourrelly,

quien tuvo la gentileza de ayudar a resolver algunas incógnitas de orden

sistemático; a la Comisión de Investigación Científica de la Universidad

de Concepción por el financiamiento de esta investigación, y a la Srta. Elsa

Ruiz M., Secretaria del Departamento de Botánica por la mecanografía de

esta publicación y sus sugerencias respecto a la redacción.

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INDICE DE TAXA

Actinastrum

hantzchi 26

Actinotaentum

capax var. minus 42

cucurbitum 42

elongatum 42

minutissimum 42

Ankistrodesmus

aciculare 22

duplex 22

falcatus 20

falcatus var. acicularis 21

falcatus var. mirabilis 21

falcatus var. spinmlliformis 21,22

mirabilis 21

Aphanochaete

repens 33

Apiocystis

brauniana 18

Arthrodesmus

incus 42

octocornis 42

Audouinella 16

Bambusina

brebissont 42

moniliformis 42

Botryococcus

brauntúi 25

protuberans 25

Bulbochaete

crenulata 34

rectangularis 34

Ceratium 8

Chaetomorpha

clavata 36

Chaetosphaeridium

globosum 33

Chaetophora

elegans 32

pisciformis 32

Chara

coronata 71

foetida fma. longibracteata 72

fragilis 72

fragilis fma. microptila normalis 72

intermedia 72

Characium

brauni 19

longipes 19

minutum 19

sieboldií 19

Chlamydocapsa

planctonica 18

Chlamydomonas

ehrenbergíú 16

dinobryonú 16

siderogloea 16

Chlorella

ellipsoiddea 21

saccharophila var. ellipsoidea 21

Chlorobothrys

regularis 11

Chodatella

citriformis 21

longiseta 21

quadriseta 21

Chrysosphaerella

longispina 10

Cladophora

fracta 36

glaucenscens 36

glomerata 36

rivularis 36

Closterium

abruptum 42

acerosum 42

acerosum var. elongatum 42

aciculare 43

acutum 43

acutum var. variable 43

archerianum 43

calosporum 43

cynthia 43

cynthia var. jenneri 43

delponter 43

dianae 43

dianae var. brevius 43

ehrenbergíi 43

ehrenbergi var. malinvernianum 44

excavatum 43

gracile 44

kuetzingú 44

lanceolatum 44

leibleinú 44

libellula 44

libellula var. intermedium 44

libellula var. interruptum 44

lineatum 44

littorale 44

lunula 44

macilentum 44

magellanicum 45

malmer 44

moniliferum 45

parvulum 45

parvulum var. angustum 45

praelongum 45

pritchardianum 45

pronum 45

pseudolunula 45

ralfsii 45

ralfsit var. inmane 45

rostratum 45

setaceum 45

striolatum 45

striolatum var. borgei 45

toxron 45

tumidulum 46

tumidum 46

turgidum 46

venus 46

Coelastrum

cambricum 26

microporum 26

proboscideum 26

sphaericum 26

Colacium

vesiculosum 16

Coleochaete

orbicularis 34

scutata 34

Cosmarium

abbreviatum var. planctonicum 48

amoenum 46

amoenum var. mediolaeve 46

qn,

angulosum var. concinnum 46

araucaniensis 46

bioculatum 46

bioculatum var. depressum 46

binum 46

bipunctatum 46

bireme 46

bireme var. huzelíi 47

blyttii 47

blytti var. novae-sylvae 47

botrytis 47

botrytis var. depressum 47

botrytis var. tumidum 47

calcareum 47

circulare 47

circulare var. minus 47

concinnum 46

connatum 47

contractum 47

contractum var. ellipsoideum 47

conspersum var. subrotundatum 47

corumbense íma. 47

crenatum 48

crenatum ífma. 48

cucumis 48

cucurbitum var. magellanicum 48

denticulatum var. perspinosum 48

depressum 48

depressum var. achondrum 48

depressum var. circulare 48

depressum var. planctonicum 48

dichondrum 48

difficile 48

difficile var. dilatatum 48

dusenú 48

dusenú var. triquetrum 48

elegantissimum íÍfma. minor 49

excentricum 49

exiguum 49

formosulum 49

globosum 49

granatum 49

hammer: 49

humile var. striatum 49

humile var. substriatum 49

laeve 49

laeve var. octangulare 49

latum 47

leiodermum 49

lobatum var. minus 50

lundellii var. ellipticum 50

incisum fma. major 49

intermedium 49

isthmochondrum 49

magnificum var. patagonicum 50

melanosporum 50

meneghinii 50

minimum 50

moniliforme 50

montliforme fma. panduriformis 50

moniliforme var. panduriformis 50

monomazum var. polymazum 50

montanum var. pseudoregnesii 50

nitidulum 50

obtusatum 50

ochthodes 50

ochtodes var. amoebum 50

ornatum 5l

orthostichum var. pumilum 51

ovale 51

pachydermum 51

parallelum 51

parvulum 51

phaseolus 51

portianum 51

portianum var. maius 51

pseudanae 51

pseudobotrytis var. majus 5l

pseudoconnatum 51

pseudoprotuberans 51

pseudoprotuberans íma. 52

pseudopyramidatum 52

pseudokirchneri 52

pseudotinecense 52

punctulatum 52

punctulatum var. subpunctulatum 52

pygmaeum 32

pyramidatum 52

pyramidatum ífma. maxima 52

pyramidatum var. transitorium 52

quadratum 52

quadrifarium fma. major 52

quadrifarium íma. octasticha 52

quadrum 53

rectangulare 53

regnesti 53

regnesíi var. montanum 53

scorbiculosum 53

speciosissimum 53

speciosum var. rectangulare 53

9. —

subartoum 33

subcrenatum 53

subgranatum 533

subprotumidum 53

subprotumidum ma. 53

subspeciosum 53

subspeciosum var. validius 53

subtumidum 54

subtumidum var. borgei 54

subtumidum var. klebsí 48,50

teilingii 54

tetragonum var. lundelliíi 54

tetraophtalmum 54

tetraophtalmum var. patagontcum 54

tinctum 54

tinctum var. intermedium 54

trilobulatum 54

trilobulatum var. bioculatum 54

turgidum var. minor 54

venustum var. minus 54

wittrockí 54

wittrockíi var. schmidlei 54

Crucigenmia

quadrata 26

rectangularis 26

Cylindrocapsa

conferta 32

Cylindrocystis

brebissoníi 40

crassa 41

Desmidium

baileyi 55

baileyi var. baileyi íma. tetragonum 59

eylindricum 55

swartzii 55

Desmococcus

vulgaris 33

Dictyosphaerium

ehrenbergianum 25

pulchellum 25

Dimorphococcus

lunatus 25

Dinobryon

acuminatum 8

cylindricum 9

cylindricum var. divergens 9

cylindricum var. palustre 9

divergens 9

divergens var. schauinslandii 9

eurystoma 9

hp E—

sertularia 9

Draparnaldia

glomerata íma. 33

Echinosphaerella

limnetica 21

Elakatothrizx

gelatinosa 31

Enteromorpha

bulbosa 32

prolifera 32

Eremosphaera

viridis 21

Euastrum

abruptum var. subglaziowi 55

acanthophorum 55

affine 55

ansatum 55

ansatum var. attenuatum 56

attenuatum 56

attenuatum var. lithuanicum 56

bidentatum 56

binale 56

binale fma. 56

binale var. parallelum 56

cuneatum var. robustum 56

denticulatum 56

didelta 56

dubium 56

dubium var. ornatum 56

duseníi var. triquetrum 48

elegans 36

evolutum 56

evolutum var. glaziowii 56

evolutum var. integrius 56

evolutum var. perornatum 57

gemmatum 57

humberti 57

inerme var. glabrum 57

insulare var. silesiacum 57

johnsonii 57

oblongum 57

pectinatum var. porrectum 56

pinnatum 57

spinulosum 57

subamoenum 57

turneri 57

validum var. glabrum 57

Euastropsis

richteri 29

Eudorina

cylindrica 17

elegans 17

Euglena

acus 13

fusca 14

spirogyra 14

Franceía

droescheri 22

ovalis 22

Gemellicystis

neglecta 19

Geminella

interrupta 31

Glenodinium

oculatum 8

Gloeochaete

wittrockiana 18

Gloeococcus

schroeteri 20

Gloeocystis

gigas 19

gigas var. pallida 19

Gloeotila

mucosa 31

Golenkinia

radiata 24

Gonatozigon

aculeatum 41

brebissonú 41

kinahanú 41

monotaentum 41

pilosum 41

Gontum

pectorale 17

Gymnodinium 6

Gyropaine

kosmos 14

Helikotropis

okteres 14

Hofmania

lauterborni 26

Hyalotheca

dissiliens 57

dissiliens var. hians 58

mucosa 58

Kirchneriella

contorta 22

obesa 22

Lepocinclis 14

Mallomonas

alpina 10

caudata cír. fastigiata 10

elongata 10

cfr. fastigiata 10

Mesotaenium 41

Micractinium

pusillum 24

Micrasterias

cruxmelitensis 58

denticulata 58

radians 58

radians var. bogoriensis 58

radiata 58

radiosa var. ornata fma. elegantior 58

rotata 58

sol var. elegantior 58

sol var. ornata 58

tetraptera var. longesinuata 58

truncata 58

Microspora

stagnorum 31

Microthamnion

kuetzingianum 33

Mischococcus

confervicola 11

Monoraphidium

contortum 22

griffithii 22

Monostroma

membranacea 32

Mougeotia

scalaris 37

Nephrocytium

agardhianum 22

limneticum 22

lunatum 22

Netrium

digitus 41

digitus var. lamellosum 41

digitus var. rectum 41

interruptum var. interruptum Ífma. minus 41

Nitella

clavata 72

flexilis var. chilensis 72

lechleri 72

Oedogonium

capilliforme 34

capilliforme var. autrale 35

ciliatum 35

crispum 35

fasciatum 35

fragile 35

grande 35

landsboroughii var. gemelliparum 35

macrandrium 35

macrospermum fma. patagonicum 35

nodulosum 35

pringsheimi var. nordstedtii 35

varians fma. 35

undulatum 35

undulatum fma. 35

Oocystis

borger 22

crassa 23

elliptica 23

cfr. elliptica fma. minor 23

gloecystiformis 23

naegelíi 23

natans 23

solitaria 23

solitaria var. maxima 23

solitaria fma. major 23

Ophiocytium

cochleare 12

majus 12

parvulum 12

Pandorina

morum 17

Paulschulzia

pseudovolvox 18

Pediastrum

angulosum var. asperum 29

araneosum var. rugulosum 29

boryanum

boryanum var. boryanum 29

boryanum var. granulatum 29

boryanum var. longicorne 29

duplex 30

duplex var. asperum 22

duplex var. duplex 30

ehrenbergúíú 30

ehrenbergú var. truncatum 30

integrum var. braunmianum 30

kawraiskyi 30

kawraiskyú fma. 30

muticum var. crenulatum 30

pertusum 30

pertusum var. clathratum 30

simplex 30

simplex var. compactum 30

simplex var. duoderianum 30

tio Ñ

tetras 30

tetras var. tetraodon 30

Penium

closteroides fma. minor 44

libellula 44

magellanicum 48

margaritaceum 59

navicula íma. 59

spirostriolatum 59

Peranema

trichoporum 15

Petalomonas 15

Peridinium

cinctum 6

insconspicuum 6

lomnicki 6

volzú 6

volzúi var. cinctiformis 7

volzúi fma. compressum 7

willei 7

willei fma. lineatum 7

Phacus

acuminatus 14

curvicauda 14

longicauda 14

pleuronectes 15

tortus 15

Pleodorina

californica 17

Pleurococcus

vulgaris 33

Pleurotaentum

coronatum 59

ehrenbergíi 59

ehrenbergíi fma. 59

ehrenbergíi var. undulatum 59

maximum 59

ovatum 59

trabecula 59

trabecula var. rectum 59

truncatum 59

Polyedriopsts

spinulosa 19

Prasiola

antarctica 32

tessellata 32

Pseudosphaerocystis

lacustris 19

Quadrigula

closterioides 23

Rhaphidium

polymorphum 21

Rhizoclonium

casparyi 36

hieroglyphicum 36

Scenedesmus

abundans 28

acuminatus 26

acutiformis 27

acutus 27

antennatus 27

arcuatus 27

arcuatus var. bicaudatus 27

bicaudatus 27

bijugatus 27

bijugatus var. alternans 27

brevispina 27

carinatus 27

dimorphus 27

ecornis 27

ecornis var. disciformis 27

ellipsoideus 27

falcatus 27

longus var. naegelíi 28

obliquus 27,28

obliquus var. dimorphus 28

opoliensis 28

ovalternus 28

quadricauda 28

quadricauda íma. abundans 28

quadricauda fma. granulatus 28

quadricauda fma. horridus 28

spinosus 28

subspicatus 28

Schizochlamys

gelatinosa 18

Selenastrum

acuminatum 27

bibraianum 24

gracile 24

minutum 24

westii 24

Sirogonium

sticticum 38

Sphaerocystis

schroeteri 20

Sphaerozosma

aubertianum 60

aubertianum var. archeri 60

ezcavatum var. subquadratum 60

> 0

granulatum 71

laeve 60

vertebratum 60

Spirogyra

affinis 37

arcta 37

bellis 37

calospora 37

catenaeformis 37

condensata 37

decimina 37

flavescens 38

gracilis 38

inaequalis 38

jugalis 38

longata 38

neglecta 38

nitida 38

porticalis 38

quadrata fma. tenuior 38

quinina 38

rivularis 38

setiformis 38

stictica 38

submaxiíma 38

tenuior 38

tenuissima 38

teodoresci 38

ternata 39

vartans 39

vartans fma. 39

Spirotaenia

minuta 42

obscura 42

Spondylosium

panduriforme fma. limneticum 60

planum 60

Staurastrum

aculeatum 60

alternans 60

anaticum tfma. denticulatum 60 -

anaticum var. subfloriferum 60

arachne var. curvatum 60

arcuatum íma. 6l

armigerum var. furcigerum 6l

aspinosum fma. 6l

asterias 6l

asterioideum var. nanum 6l

avicula 6l

avicula fma. 6l

avicula var. subarcuatum 6l

bibrachiatum 6l

bidentulum fma. maior 6l

bienneanum 6l

brachiatum 61

brebissoni 6l

brebissonúi var. maximum 6l

brevispinum 62

chaetopus 62

cingulum var. obesum 62

cingulum var. ornatum 62

corpulentum 62

crenulatum 62

denticulatum 62

dilatatum 62

dilatatum fma. 62

dispar fma. 62

disputatum var. extensum 62

echinatum 62

excavatum var. minimum 62

furcatum 62

furcigerum 62

galpinú 63

gladiosum 63

gracile 63

grande var. parvum fma. 63

grande var. rotundatum 63

hexacerum 63

10tanum 63

irregulare 63

iwersenú 63

iversenti var. americanum 63

johnsonii 63

laeve 63

leptacanthum 63

leptocladum 63

leptocladum var. cornutum 63

longipes 64

longipes var. evolutum 64

longiradiatum 64

manfeldtiíi var. annulatum 64

megacanthum 64

muticum 64

nuduliferum 64

orbiculare 64

orbiculare var. depressum 64

oxyacantha var. patagonicum 64

paradoxum 64

paradoxum var. parvum 64

perundulatum 64

Po MON

pingue 64

pingue var. tridentata 64

pinnatum var. reductum 65

planctonicum fma. 65

polymorphum 65

polymorphum var. cinctum 65

proboscideum 65

proboscideum íma. 65

pseudosebaldiíi fma. 65

punctulatum 65

punctulatum fma. 65

quadrangulare var. contectum 65

rectangulare íma. minor 65

rotula 65

rotula var. smithii 65

santessoni 66

sebaldii var. ornatum 66

sebaldíi var. ornatum íma. planctonica 66

sebaldiíi var. brasiliense 66

setigerum 66

sexcostatum var. productum 66

smithii 66

spongiosum 66

striolatum 66

striolatum íma. minor 66

subavicola var. tyrolense 66

subgrande var. convexum 66

suborbiculare 67

subpolymorphum 67

tetracerum 67

tetracerum var. biverruciferum 67

tetracerum var. evolutum 67

tetracerum fma. trigona 67

tohopekaligense 67

tohopekaligense var. brevispinum 67

trifidum var. inflexum 67

urinator var. brasiliense 67

valdivianum 67

valdiviense 67

vestitum 68

Staurodesmus

convergens 68

convergens var. maximum fac. dickiei 68

convergens íma. 68

crassus 68

curvatus 68

cupisdatus 68

cuspidatus var. acuminatus 69

cuspidatus var. divergens 69

cuspidatus var. maximum fac. tricuspidatus 69

cuspidatus fac. tricuspidatus 69 A gos DOV

dejectus 69 2d om

dejectus var. patens 69

dickiei 69

dickiei fma. 69

dickiei var. maximus 69

dickiei var. rhomboideus 69

extensus 69

extensus var. joshuae 69

joshuae var. extensus 69

joshuae fac. joshuae 69

joshuae var. longispinus 69

mamillatus 69

megacanthum 70

patens 70

phimus 70

sellatus fma. brevispina 70

subulatus 70

triangularis 70

triangularis var. convergens 70

triangularis fma. curvispina 70

triangularis fac. janus 70

triangularis fac. stroemú 70

triangularis var. subparallelus 70

triangularis fac. triangularis 70 '

Stichococcus

subtilis 31

Stichogloea

doederleinú 8

Stigeoclonium

aestivale 33

amoenum 33

fastigiatum 33

longipilum 33

lubricum 33

tenue 33

Stipitochrysts

monorhiza 8

Stipitococcus

vas 11

Stylosphaeridium

stipitatum 19

Synura

petersenúi 11

uvella 11

Teilingia

granulata 70

Tetmemorus

co e

brebissonú 71

brebissonú var. attenuatus 71

granulatus 71

laevis 71

Tetrasdesmus

wisconsinensis 29

Tetraedron

caudatum 19

caudatum var. longispinum 19

constrictum 20

enorme 20

longispinum 20

tetraedricum 20

trigonum 20

Tetraspora

lacustris 18

lubrica 18

Tetrastrum

elegans 29

Tolypella

apiculata 72

Trachelomonas

elliptica 15

hispida 15

hispida var. punctata 15

volvocina 15

Trentepohlia

aurea 34

jolithus 34

polycarpa 34

Treubaria

triappendiculata 24

Tribonema

cylindricum 12

elongatum 12

tenerrimus 12

viride 12

Trochiscia

arguta 24

aspera 24

reticularis 24

Ulothrizx

implexa 31

stagnorum 31

subtilis 31

tenerrima 31

variabilis 31

Uronema

africanum 31

Vaucheria

-Mbr=-

dillwyni 13

geminata 13

racemosa 13

repens 13

sessilis 13

subarechavaletae 13

terrestris 13

Volvozx

aureus 17

Xanthidium

antilopaeum 71

dilatatum 71

smithúu 71

smithiíi var. variabile 71

variabile 71

Zygnema

eruciatum 40

ericetorum 40

insigne 40

stellinum var. tenue 40

tenue 40

vaucherú 40

Zygogonium

ericetorum 40

ericetorum var. terrestre 40

poÑ PO

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tiniuida dentro. de, elo

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LA IMPRENTA DE LA UNIVERSIDAD DE

CONCEPCION (CHILE), EL 13 DE OCTUBRE

DE 1977

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

“OTTMAR WILHELM GROB”

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

CaAsiLLA 301 — CONCEPCIÓN

CHILE

EDITORIAL UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

SATANA

BOTANICA 1977 N2 34

DESMIDIACEAS DE CHILE II

Desmidiaceas de la Isla de Chiloé

POR

OSCAR O. PARRA Y MARIELA GONZALEZ

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

ENSTETVUTO DE; BLOLOGTA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

(HEDETE

DIRECTOR :

Dr. Oscar Matthei ].

COMITE EDITOR:

Dr. Oscar Matthei J. Prof. Marco A. Retamal

Prof. Lajos Biro B. Prof. Clodomiro Marticorena

Prof. Ivonne Hermosilla B. Dr. Jorge N. Artigas

EDITORES EJECUTIVOS: Hugo I. Moyano

Roberto Rodríguez

ELA CAN A

BOTANICA 1977 N2 34

DESMIDIACEAS DE CHILE III

Desmidiaceas de la Isla de Chiloé

POR

OSCAR O. PARRA Y MARIELA GONZALEZ

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

DESMIDIACEAS DE CHILE ll: DESMIDIACEAS DE LA

por

OSCAR O. PARRA y MARIELA GONZALEZ (*)

RESUMEN

La flora desmidiológica de la isla de Chiloé, Chile es analizada cualitati-

vamente. Las muestran fueron obtenidas de diferentes tipos de hábitat tales

como: pozas, charcos, riachuelos y lagos.

Se determinó un total de 150 taxa, 47 de los cuales se señalan por

primera vez para Chile.

Los géneros que caracterizan esta flora son Closteriwm, Cosmarium,

Staurastrum y Staurodesmus.

Se entrega un análisis taxonómico de cada taxa incluyendo además

mapas, tablas de distribución y dibujos originales.

ABSTRACT

The desmidial flora of ponds, pools, streams, lagoons and lakes of

Chiloé Island, Chile, has been studied.

A total of 150 taxa are determined and 47 of them are new for Chile.

Closterium, Cosmarium, Staurastrum and Staurodesmus are the most

important genera.

A taxonomic analysis of each taxa is also given, including chart, dis-

tribution tables and original figures.

INTRODUCCION

Una expedición botánica efectuada a la isla de Chiloé (7350'5S, 42*30'"W)

en Enero de 1975, aportó numerosas muestras de fitoplancton de agua dul-

ce, las cuales se analizan en el presente trabajo.

(*) Depto. de Botánica, Instituto de Biología, Casilla 1367, Universidad de Concepción,

Concepción, Chile.

(**) Investigación financiada por la Comisión de Investigación Científica de la Uni-

versidad de Concepción.

El área de muestreo se circunscribió a toda la isla y las localidades

de colecta correspondieron a diferentes tipos de habitat tales como: pozas,

charcos, riachuelos, arroyos, lagunas y lagos, cuyas descripciones se en-

tregan más adelante (Fig. 1).

Esta investigación está restringida a la flora desmidiológica y es un

nuevo aporte a los ya generados en este grupo (Parra 1973a, 1973b, 1975

y 1976).

Prácticamente, este es el primer estudio que se realiza en la isla de

Chiloé sobre fitoplancton de agua dulce, ya que los únicos registros cono-

cidos pertenecen a Espinosa (1917), quién en su trabajo "Los Alerzales de

Piuchué” incluye una lista de 17 taxa, de los cuales sólo uno corresponde

a Desmidiaceas, específicamente un ejemplar del género Cosmarium.

La metodología y el tratamiento taxonómico utilizado en el presente

estudio, han sido descritos en detalle en los trabajos previos ya citados

del primer autor.

Por último, queremos agradecer a los profesores C. Marticorena, R.

Rodríguez y al curador del herbario Sr. M. Quezada por las facilidades

otorgadas a uno de los autores en la expedición. A los Sres. N. Moya y

F. Calvo por la terminación de los dibujos, a la Srta. G. Ruiz por la mecano-

grafía del trabajo y a la Comisión de Investigación Científica de la Uni-

versidad de Concepción por el financiamiento de este estudio.

DESCRIPCION DE LOS LUGARES DE MUESTREO

1.— Arroyo, a 15 km al sur de Chacao, en el camino Chacao-Ancud,

de un ancho de 4-5 metros y una profundidad media de 1 metro, con aguas

poco correntosas. Ubicación geográfica (41? 51'S, 13” 37"W); Temperatura,

15%C; pH 5.2; Fecha, 101-1975.

2— Charco, a 12 km al norte de Ancud, en el camino Chacao-Ancud.

Este recibe agua de una pequeña vertiente, con vegetación palustre abun-

dante. Ubicación gecgráfica (41? 51” S, 73? 37'"W); Temperatura, 18"C; pH

5.4: Fecha, 10-1-1975.

3.— Riachuelo, el cual atraviesa el camino de Ancud a Castro, poco

correntoso y con sólo 0.4 a 0.5 metros de profundidad. Ubicación geográ-

fica (419 57'S, 737 47"W); Temperatura, 26”C; pH 5.5; Fecha, 10-1-1975.

4.— Lago Tarahuin, ubicado a orillas del camino Castro-Quellón. Tiene

7 km de largo y en su parte más ancha 1.2 Km, desagua por el río Tara-

huin. Ubicación geográfica (42 43'S, 73” 44"W); Temperatura, 17?%C; pH 5.5;

Fecha, 11-1-1975.

95.— Pequeñas pozas, ubicadas en claros de selva Chilota, a más o

menos 1 Km del lago Tarahuin por el camino Castro-Quellón. Ubicación

geográfica (42% 435, 737 47"W); Temperatura, 18%C; pH 5.0; Fecha 11-1-1975.

6.— Lago de Natri, ubicado a más o menos 3 Km al Sur de la ciudad

de Castro, en el camino Castro-Quellón, de 7 km de largo y en su parte

más ancha 1.5 Km, desagua por el río Natri. Ubicación geográfica (42? 47'5,

73% 50"W); Temperatura, 22”C; pH 5.4; Fecha, 11-1-1975.

7.— Laguna Guillermina, es una pequeña laguna de 600 metros de

largo por 200 metros en su parte más ancha, a 3.5 Km al norte de Quellón.

Ubicación geográfica (43 04'S, 78 40'"W); Temperatura, 19”C; pH 5.0; Fe-

cha, 12-1-1975.

8.—Lago Tepuhueico, de 5.5 Km de largo por 4.5 Km en su parte más

ancha. Recibe aguas del río "Aguas Muertas” y desagua por el río “Bra-

vo”. Ubicación geográfica (42? 47'S, 74” 58"W); Temperatura 20%C; pH 5.8;

Fecha, 12-1-1975.

9.— Lago Huillinco, es uno de los lagos más grandes de la isla de Chi-

loé, 8.5 Km de largo por 3.5 Km en su parte más ancha, recibe aguas del

estero “Cudehue”, río “Huillinco”, río “Bravo”, río "Notué”, estero "Chan-

cura”, río “Negro” y río "Coipo”. Desagua hacia el norte por un profundo

cañón o angostura de 100 metros de ancho y 2 Km de largo y se une con

la laguna “Cucao”, al océano Pacífico. Al parecer el lago "Huillinco” reci-

biría influencia de las mareas por lo que su salinidad se vería afectada,

desgraciadamente no tenemos mayores antecedentes. También se colectó

en pozas adyacentes al Lago Huillinco. Ubicación geográfica (42? 40'5,

74? 59,W); Temperatura, 177C; pH 5.8; Fecha 13-1-1975.

PARTE GENERAL

El análisis de la flora desmidiológica de la isla de Chiloé arroja los

siguientes resultados:

Se determinaron un total de 150 taxa, de los cuales 47 son nuevas ci-

tas para Chile.

A continuación se da la lista de los géneros encontrados y el número

de taxa de cada uno de ellos:

Género N* de Taxa

Closterium 32

Cosmarium 28

Staurastrum 29

Staurodesmus 18

Euastrum 10

Netrium 6

Pleurotaentum 4

Actinotaentum 4

Penium 4

Gonatozygon 3

Micrasterias 2

Xanthidium 2

Género N* de Taxa

Arthrodesmus

Desmidium

Cylindrocystis

HEyalotheca

Bambusina

Teilingia

Tetmemorus

Rbk DN

De esta lista se observa que los géneros mejor representados en la

isla son: Closterium, Cosmarium, Staurastrum y Staurodesmus, espe-

cialmente si consideramos que estos están presentes en todos los habitat

estudiados como se ve claramente en la tabla que se da a continuación:

E as

GENERO lb cul desoad zoe

9 5 O. 3 E 3 0%

go an aa o

Cylindrocystis l — l — l — l —

Netrium 2 — 2 1 1 3 2 — 1

Gonatozygon ] 2 2 — 2 — 1 l —

Pentium 4. — l — l-- .— 2141055

Closterium 9 AS Sucia. 7 6 4 8

Pleurotaentum — 1 1] 2 1 1 l = —

Tetmemorus 1 =— = — —

Euastrum 2) 1 2 4 2 4 l — 1

Micrasterias — MA ll = —= ll —- — —

Actinotaentum 2 — — ll — — l —- —

Cosmarium al 4 IBN 3101011 4 3 1

Xanthidium — l — .— 1 l —

Staurodesmus 2 4 1 9 3 y 1 4 1

Arthrodesmus 1 -- l =—. = — ==

Staurastrum 6 5 E: Sup d6 3 2

Hyalotheca — — — 1 l — — l —

Bambusina — E A

Teilingia == — — l — l —= — —

Desmidium —= LR — pus l.= — =.—

TS AS A A

De aquí podemos decir que los géneros Cylindrocystis, Hyalotheca,

Bambusina, Teilingia, Tetmemorus y Desmidium están representados só-

lo por un taxa, siendo Cylindrocystis el más frecuente.

Si bien los géneros Euastrum, Netrium, Gonatozygon y Pleurotae-

niuwm se encuentran representados por un número regular de taxa, sus fre-

cuencias en los lugares de muestreo es alta.

Los siguientes taxa se citan por primera vez para Chile:

Netrium digitus var.

digitus var.

Netrium digitus var.

oblongum

Netríum

Netrium

naegelii

parvum

rhomboideum

Penium silvae-nigrae

Penium spinospermum

Closterium cornu

Closterium costatum

Closterium cynthya var. latum

Closterium cynthya var. robustum

Closterium intermedium

Closterium malinvernianiforme

Closterium moniliferum var. concavum

Closterium malmei var. semicirculare

Closterium praelongum var. porosum

Pleurotaentum minutum var.

Euastrum binale var.

latum

sectum

Euastrum obesum

Euastrum pulchellum var. protrusum

Euastrum sinuosum var.

marchesont

Micrasterias papillifera

Actinotaenium cleve

Actinotaenium cucurbita

Actinotaenium cucurbitinum fíma. minus

Cosmarium

Staurodesmus

taurodesmus

Staurodesmus

clepsydra

elegantissimum

margaritiferum

quadratum var. willei

rectangulare var. cambrense

undulatum var. minutum

connatus

glaber

glaber var.

indentatus

pinguis

sellatus

debaryanus

hirundinella

limnophilus

Staurodesmus spencerianus

Arthrodesmus bifidus

Staurastrum gracile var. nanum

Staurastrum mandfeldti

Staurastrum orbiculare var.

hibernicum

Staurastrum oxyacanthum var. polyacanthum

Staurastrum pseudopelagicum

Staurastrum subavicula

Staurastrum triforcipatum

En cuanto al número de taxa que se encuentran en cada uno de los

lugares estudiados tenemos que:

A A O E O

AOS E O. A. A

teo A E

7.— Laguna Guillermina

8.— Lago Tepuhueico

9: Beciio RULES. A

42 taxa

Ez A

AENA

9. "

Es notoria la disminución del número de taxa en el Lago Huillinco, la

que podría deberse a entrada de aguas marinas en este lago, por influen-

cia de las mareas.

Finalmente, la lista completa de los taxa y su ubicación en los lugares

estudiados es la siguiente:

a 8

2 3 EUR

O: O. o 9 3 3 3 9

POB. 3 Bru) ias

E pe 9 E 3 U 3 iS

xl 9) [5] E A Z U E las]

Cylindrocystis

brebissonú + + + +

Netrium

digitus + + +

digitus var. naegelú +

digitus var. parvum + +. + + + +

digitus var. rhomboideum +

interruptum +

oblongum +

Gonatozygon

aculeatum +

brebissontú + + + +

kinahani HFo+ + E

TAXA

Penium

margaritaceum

silvae-nigrae

spinospermum

spirostriolatum

Closterium

abruptum

acerosum

calosporum

cornu

costatum

cynthia

cynthia var. latum

eynthia var. robustum

delponte

dianae

dianae var. brevius

ehrenbergíi var. malinver-

nianum

gracile

intermedium

kuetzingúl

leibleinú

lidellula

libellula var. interruptum

malinvernianiforme

malmet

moniliferum

moniliferum var. concavum

malmei var. semicirculare

parvulum

parvulum var. angustum

praelongum var. porosum

pritchardianum

ralfsít

striolatum

Arroyo

+ +++

Charco

Riachuelo

++ +++

+ +

Tarahuin

Pozas

Natri

Guillermina

Tepuhueico

Huillinco

TAXA

Arroyo

Charco

Riachuelo

Tarahuin

Pozas

Natri

Guillermina

Tepuhueico

Huillinco

toxon

turgidum

Venus —

Pleurotaenium

ehrenbergú

minutum var. latum

trabecula

trabecula var. rectum

Tetmemorus

laevis +

Euastrum

attenuatum var. lithuanicum

binale —

binale var. sectum

denticulatum +

dubium

evolutum var. glaziowit

oblongum

obesum

pulchellum var. protrusum

sinuosum var. marchesont

Micrasterias

papillifera

rotata

Actinotaenitum

cleves

cruciferum

cucurbita +

cucurbitinum fma. minus +

Cosmarium

binum Se

bioculatum

botrytis

TAXA

blytti

clepsydra

connatum

cucumis

depressum var. planctonicum

difficile

elegantissimum

laeve

laeve var. octangulare

margaritiferum

monomazum var. polymazum

ochthodes var. amoebum

ornatum

portianum

pseudopyramidatum

pyramidatum

quadratum var. willes

quadrifarium

rectangulare var. cambrense

regnelliz

subspeciosum var. validius

subtumidum var. borgel

tinctum

trilobulatum var. tumidum

undulatum var. minutum

Xanthidium

antilopaeum

smithii

Staurodesmus

connatus

convergens

cuspidatus var. divergens

dejectus

dickiei

extensus

Arroyo

Charco

+ +

Riachuelo

Tarahuin

+ +

Pozas

Natri

Guillermina

Tepuhueico

Huillinco

TAXA

Arroyo

Charco

glaber

glaber var. debaryanus +

glaber var. hirundinella

glaber var. limnophilus ap

indentatus

mamillatus

patens

phimus

pinguis

sellatus

spencerianus

triangularis +

Arthrodesmus

bifidus

octocornis eS

Staurastrum

alternans + +

asterias +

asterioideum var. nanum +

avicula var. subarcuatum

brebissontú

dilatatum + +

furcigerum +

gladiosum

gracile

gracile var. nanum

iNCONSPiCUUM

laeve

manfeldti

manfeldtii var. annulatum

muticum

orbiculare var. hibernicum +

oxyacanthum var. polyacanthum

paradoxum var. parvum

pinnatum var. reductum

Riachuelo

Tarahuin

++ +++

Pozas

Natri

++++

Guillermina

Tepuhueico

Huillinco

TAXA

Arroyo

polymorphum

pseudopelagicum

punctulatum

quadrangulare var. contectum

rotula

subavicula

subpolymorphum

tetracerum

tohopekaligense

triforcipatum

Hyalotheca

dissiliens

Bambusina

brebissontú

Teilingía

granulata

Desmidium

cylindricum

Charco

Riachuelo

Tarahuin

Pozas

Natri

Guillermina

Tepuhueico

Huillinco

PARTE SISTEMATICA

SACCODERMAE

1. Familia MESOTAENIACEAE

CYLINDROCYSTIS Meneghini (1838)

Cyl. brebissonil Meneghini (1838) in Krieger (1937), p. 207, Lám. 6, Figs.

4 y 5.

long. cell. 32-52.5, lat. 10-20.

Habitat.— 1, 3, 9 y 7 (Figs. 1 y 2).

NETRIUM (Naegeli) Itzigsohn et Rothe (1856)

N. digitus (Ehrenberg) Itzigsohn et Rothe (1856) in West et West (1904),

p. 64.

long. cell. 200-250, lat. 57-72, lat. ap. 30.

Habitat.— 1,5 y 6 (Fig. 3).

N. digitus var. naegelii (Brebisson) Krieger (1937), p. 218, Lám. 8, Figs. 4 y 5.

leng. cell. 1'98, lat. 375.

Habitat.— 6 (Fig. 4).

N. digitus var. parvum Borge (1925), p. 14, Lám. 1, Fig. 15.

long. cell. 47-105, lat. 12-38, lat. ap. 8-20.

Habitat.— 1,3,4,6,7 y 9 (Figs. 6,7,8 y 9).

N. digitus var. rhomboideum Grónblad (1920), p. 13, Lám. 4, Fig. 38.

long. cell. 144, lat. 54, lat. ap. 12.

Habitat.— 7 (Fig. 5).

N. interruptum (Brébisson) Luetkemueller (1902), p. 395,396,404,407.

long. cell. 147, lat. 30.

Habitat.— 3 (Fig. 10).

N. oblongum (De Bary) Luetkemueller (1902), p. 407.

long. cell. 117, lat. 40.

Habitat.— 1 (Fig. 11).

Pr EE

2.— Familia GONATOZYGACEAE

GONATOZYGON De Bary (1856)

G. aculeatum Hastings (1892), p. 29, Figs. in text.

long cell. 159, lat. 10.5.

Habitat.— 5 (Figs. 12 y 13).

G. brebissonii De Bary (1858), p. 77, Lám. 4, Figs. 26 y 27.

long. cell. 87-130, lat. 10-38.

Habitat.— 2,355 y 7 (Figs. 14,15 y 16).

G. kinahani (Archer) Rabenhorst (1868) in West et West (1904), p. 35, Lám.

2. Figs: 13.

long. cell. 181-193, lat. 8-14.

Habitat.— 1,23 y 8 (Fig. 17).

3.— Familia DESMIDIACEAE

PENIUM Brébisson (1844)

P. margaritaceum (Ehrenberg) Brébisson in Ralfs (1848), p. 149, Lám. 25,

Figs a,b: y e.

long. cell. 145-200, lat. 25.

Habitat.— 1 (Fig. 18).

P. silvae-nigrae Rabanus (1923), p. 229, Lám. 2, Fig. 5.

long. cell. 38, lat. 18.

Habitat.— 1 (Fig. 24).

P. spinospermum Joshua (1833), p. 292; Krieger (1937), p. 237, Lám. 1l,

Figs. 6-9.

long. cell. 33, lat. 13.5.

Habitat.— 1 (Figs. 22 y 23).

P. spirostriolatum Barker (1869), p. 194; Krieger (1937), p. 227, Figs. 1-6.

long. cell. 120-178, lat. 20-24.

Habitat.— 1,3 y 5 (Figs. 19,20 y 21).

ELO y

CLOSTERIUM Nitzsch (1817)

C. abruptum W. West (1892), p. 719, Lám. 9, Fig. 1.

lerg; cell. 150-195, lat. 11-17.5, lat! ap: 67.5.

Habitat.— 3 y 5 (Fig. 48).

C. acerosum (Schrank) Ehrenberg (1828), Lám. 2, fig. 9.

long. cell. 290-365, lat. 47-48, lat. ap. 10.

Habitat.— 1 y 3 (Fig. 45).

C. calosporum Wittrock (1869), p. 23, Lám. 1, Fig. 11.

long. cell. 105, lat. 6-7, lat. ap. 3.

Habitat.— 6.

C. cornu Ehrenberg (1830), p. 53,62; Kriege: (1937), p. 269, Lám. 15, Figs. 5-9.

leng. cell. 102-125, lat. 5-6, lat. ap. 2-3.

Habitat.— 1,55 y 6 (Fig. 52).

C. costatum Nordstedt (1835), p. 185, Lám. 5, Figs. 61-63.

long. cell. 250-305, lat. 30-38, lat. ap. 12-13.

Habitat.— 5 (Figs. 66,67,68 y 69).

C. cynthia De Notaris (1867), p. 65, Lám. 7, Fig. 71; Krieger (1937), p. 365,

Lám. 35, Figs. 6-10.

long. cell. 65, lat. 10, lat. ap. 3.

Habitat.— 4 (Figs. 39 y 40).

C. cynthia var. latum Schmidle (1898), p. 18, Lám. 4, Fig. 23; Krieger (1937),

p368, “Eámy 36, Bigs. 8 y 4:

long. cell. 58-59, lat. 10, lat. ap. 4.5-9.

Habitat.— 3 (Fig. 42).

C. cynthia var. robustum (G.S. West) Krieger (1937), p. 368, Lám. 36, Figs.

Oy: b:

long. cell. 50-63, lat. 8-9, lat. ap. 4.56.

Habitat.— 3,5 y 8 (Fig. 41).

C. delpontei (Klebs) Wolle (1885), p. 2; Krieger (1937), p. 348, Lám. 31,

Figs: 7>y 8.

long. cell. 650-660, lat. 25-27, lat. ap. 7-8.

Habitat.— 3 (Figs. 58 y 60).

st deso

C. dianae Ehrenberg (1838), p. 92, Lám. 5, Fig. 17; Krieger (1937), p. 294,

LOm. 19. Figs. 9-11, Lam! 20) Fla. 1.

long. cell. 120-205, lat. 15-30, lat. ap. 5-9.

Habitat.— 1,2,3,4,5 y 6 (Figs. 31 y 32).

C. dianae var. brevius (Wittrock) Petkoff (1910), p. 97; Krieger (1937), p.

290, Lám."19, Pig. 13:

long. cell. 66-115, lat. 10-18, lat. ap. 4-5.

Habitat.— 2,3 y 9 (Figs. 33 y 34).

C. ehrenbergii Meneghini (1840) in Ralís (1848) var. malinvernianum (De

Notaris) Rabenhorst (1868), p. 131; Krieger (1937), p. 287, Lám. 18,

Elie. 2

long. cell. 420, lat. 55, lat. ap. 40.

Habitat.— 1.

C. gracile Brébisson (1839) in Krieger (1937), p. 310, Lám. 30, Figs. 7-8.

long. cell. 210-215, lat. 7-8, lat. ap. 2-3.

Habitat.— 4,5 y 7 (Figs. 46 y 47).

C. intermedium Ralís (1848), p. 171, Lám. 29, Fig. 3.

long. cell. 156-410, lat. 13-25, lat. ap. 6-8.

Habitat.— 3 y 8 (Fig. 63).

C. kuetzingii Brébisson (1856) in Krieger 1937, p. 351, Lám. 32, Fig. 809.

long. cell. 310-345, lat. 14-15.

Habitat.— 1,3,7 y 8 (Figs. 49 y 50).

C. leibleinii Kuetzing (1833), p. 596, Lám. 18, Fig. 79; Ralís (1848), p. 167,

Lám., 28,.H1g. 4.

long, cell. 215, lat¿.35, lat. ap. 10.

Habitat.— 1 y 3 (Fig. 29).

C. libellula Focke (1847), p. 58, Lám. 3, Fig. 29.

long. cell. 280, lat. 42.

Habitat.— 5 y 6.

C. libellula var. interruptum (West et West) Donat (1926), p. 7; Krieger

(1887). . 256, Lám. 12, Fig, 6:

long. cell. 187-189, lat. 35-39, lat. ap. 12.5-18.

Habitat.— 3 y 7 (Fig. 44).

en ME

C. malinvernianiforme Grónblad (1920), p. 20, Lám. 4, Figs. 18-21.

long eslli3s0 lat: 47.5, latrrap:, 10.

Habitat.— 9 (Fig. 30).

C. malmei Borge (1903), p. 79, Lám. 1, Fig. 21.

long. cell. 215, lat. 48-49, lat. ap. 11.5.

Habitat.— 3 (Fig. 71).

C. malmei Bo:ge var. semicirculare Borge (1903), p. 79, Lám. 1, Fig. 22;

Krieger (1937), p. 373, .Lám. 37, Fig. 9.

long. cell. 300,1 lat: 45, lat. ap” 15.

Habitat.— 5 (Fig. 70).

C. moniliferum (Bory) Ehrenberg (1838), p. 91, Lám. 5, Fig. 16; Krieger

(1987), p. 299, Lóm.-18/Blgs. (0 y 7.

long. cell. 125-250, lat. 20-58, lat. ap. 15-20.

Habitat.— 6,8 y 9 (Figs. 25,26 y 27).

C. moniliferum var. concavum Klebs (1879), p. 10, Lám. 1, Figs. 5a y b;

Krieger (1937), p. 291, Lám. 118, Fig. 8.

lena: cell: 127, 1t. 7 lat. aqua:

Habitat.— 7 (Fig. 28).

C. parvulum Naegeli (1849), p. 106, Lám. 6, Fig. 2.

lena. cell. 52-40, lati7/-10.. lat. ap. 2-3.

Habitat.— 1,23 y 5 (Figs. 39,36 y 43).

C. parvulum var. angustum West et West (1900), p. 290, Lám. 412, Fig. 8.

long. cell. 83-85, lat. 6-6.5.

Habitat.— 4 (Fig. 38).

C. praelongum Brébisson var. porosum (Gutwinski) Krieger (1937), p. 324,

Bém: Zo, lg. 10.

long. cell. 570, lat. 20, lat. ap. 9.3.

Habitat.— 1 (Figs. 56,57. y 59).

C. pritchardianum Archer (1862), p. 250, Lám. 12, Figs. 25-27; Krieger (1937),

pez. Eám. Zo, Figs. 144,

long. cell. 520-530, lat. 25-27.

Habitat.— 4 (Figs. 53,94 y 50).

fot

C. ralfsii Brébisson (1845), p. X; Ralfs (1848), p. 174, Lám. 30, Fig. 2.

long. cell. 375-420, lat. 36-42, lat. ap. 8-9.

Habitat.— 3,5 y 7 (Figs. 64 y 65).

C. striolatum Ehrenberg (1832), p. €8; Krieger (1937), p. 337, Lám. 28,

Fig. 809, Lám. 29, Fig. 9.

long. cell. 293-365, lat. 28-30, lat. ap. 10-11.

Habitat.— 3 y 5 (Figs. 61 y 62).

C. toxon W. West (1892), p. 121, Lám. 19, Fig. 14; Krieger (1937), p. 310,

tin. 23, Figs. 4 y 5.

long. cell. 135-138, lat. 7-8, lat. ap. 3.5-4.

Habitat.— 7 (Fig. 51).

C. turgidum Ehrenberg (1838) in Ralfs (1848), p. 165, Lám. 27, Fig. 3.

long. cell. 820, lat. 75.

Habitat.— 2.

C. venus Kuetzing (1845), p. 130; Ralfs (1848), p. 220, Lám. 35, Fig. 12.

long. cell. 45-57, lat. 5-6, lat. ap. 3-3.5.

Habitat.— 15 y 6 (Fig. 38).

PLEUROTAENIUM Naegeli (1849)

Pl. chrenbergii (Brébisson) De Bary (1858), p. 75; Krieger (1937), p. 410,

Lám. 42, Figs. 4-8.

long. cell. 270-290, lat. 30-35, lat. ap. 26-28.

Habitat.— 2 y 4 (Figs. 76 y 77).

Pl. minutum (Ralfs) Delpin var. latum Kaiser (1931), p. 125; Krieger (1937),

p. 394, Lám. 39, Figs. 11-13.

long. cell. 170-180, lat. 14-15.

Habitat.— 3 (Fig. 72).

Pl. :rabecula (Ehrenberg) Naegeli (1849), p. 104, Lám. 6, Fig. A; Krieger

(1937), p. 395, Lám. 40, Figs.1-4 .

long. cell. 552-780, lat. 45-48, lat. ap. 33-35.

Habitat.— 4,5 y 6 (Figs. 73 y 75).

Pl. trabecula var. rectum (Delpin) West et West (1904), p. 212, Lám. 30,

Figs. 9 y 10; Krieger (1937), p. 402, Lám. 41, Fig. 2.

long. cell. 205-210, lat. 12-13, lat. ap. 11-12.

Habitat.— 7 (Fig. 74).

TETMEMORUS RFalís (1844)

T laevis (Kuetzing) Ralís (1848), p. 146, Lám. 24, Fig. 3.

long. cell. 52-57, lat. 18-19.

Habitat.— 1 (Figs. 78,79 y 80).

EUASTRUM Ehrenberg (1832)

E. attenuatum Wolle var. lithuanicum Woloszinska (1919), p. 49, Lám. 3,

Figs. 8-10.

long.. cell. 62-64, lat. 40-41, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 2,3 y 6 (Fig. 81).

E. binale (Turpin) Ehrenberg (1841), p. 208; Krieger (1937), p. 548, Lám. 75,

Figs. 1-3.

long. cell. 19-23, lat. 14-17, lat. isth. 4-6.

Habitat.— 1 y 4 (Fig. 90).

E. binale var. sectum Turner (1892), p. 81, Lám. 10, Figs. 35,39 y 47, Lám. 11,

Fig. 5; Krieger (1937), p. 593, Lám. 75, Fig. 20.

long. cell. 18-19, lat. 13-14, lat. isth. SOL

Habitat.— 5 (Fig. 91).

E. denticulatum (Kirchner) Gay (1844), p. 335; Krieger (1937), p. 583, Lám.

80, Figs. 15-17.

long. cell. 24-30, lat. 17-20, lat. isth. 6-6.5.

Habitat.— 1,3 y 6 (Fig. 83).

E. dubium Naegeli (1849), p. 122, Lám. 7, Fig. 2; Krieger (1937), p. 571,

Lom 79, -Pigs. 1-0;

long. cell. 24-25, lat. 15-15.5, lat. isth. 6-6.5.

Habitat.— 4 y 9 (Fig. 88).

E. evolutum (Nordstedt) West et West var. glaziowii (Borge) West et

West (1897), p. 292; Krieger (1937), p. 615, Lám. 88, Figs: 1-3.

long. cell. 48-50, lat. 30-32, lat. isth. 20-24,

Habitat.— 4 (Fig. 87).

E. oblongum (Greville) Ralís (1844), p. 189, Lám. 6, Fig. 4; Krieger (1937),

p. 526, Lám. 70, Figs. 3-6.

long. cell. 145-150, lat. 67-69, lat. isth. 20-24.

Habitat.— 5 y 6 (Fig. 82).

E. obesum Joshua (1886), p. 638, Lám. 23, Figs. 19-29; Krieger (1937), p. 495,

Fém. 59, Figs. 9 y 10. :

long. cell. 57-58, lat. 37-38, lat. isth. 10-12.

Habitat.— 7 (Figs. 84 y 85).

E. pulchellum Brébisson var. protrusum Grónblad, Prowse et Scott (1958).

long cell. 25-26, lat. 21-22, lat. isth. 6-6.5.

Habitat.— 6 (Fig. 89).

E. sinuosum Lenormand (1845) var. marchesonti.

long. cell. 56-58, lat. 38-39, lat. isth. 8-9.

Habitat.— 4 (Fig. 86).

MICRASTERIAS Agardh (1827)

M. papillifera Brébisson in Ralífs (1848), p. 72, Lám. 9, Fig. 1.

long. cell. 145, lat. 138, lat. isth. 22,5.

Habitat.— 3 (Fig. 93).

M. rotata (Greville) Ralís (1844), p. 259, Lám. 6, Fig. lc; Krieger (1937),

p: .100,.Lám. 36, Fig. 1. > -, e > :

long. cell. 270-275, lat. 225-230, lat. isth. 44-45.

Habitat.— 6 (Fig. 92).

ACTINOTAENIUM (Naegeli) Teiling (1954)

Act. clevei (Lundell) Teiling (1954), p. 393, Figs. 10-13. $4

long. cell. 90-92, lat. 30-31, lat. isth. 24-26.

Habitat.— 4 (Fig. 99).

ANA

Áct. cruciferum (De Bary) Teiling (1954), p. 396, Figs. 16 y 17.

long. cell. 17-18, lat. 10-11.

Habitat.— 7 (Fig. 98).

Act. cucurbita (Brébisson) Teiling (1954), p. 406, Fig. 66.

long. cell. 45-47, lat. 25-26, lat. isth. 17-19.

Habitat.— 1 (Figs. 96 y 97).

Act. cuicurbitinum (Bisset) Teiling fma. minus Teiling (1954), p. 399.

long. cell. 45, lat. 18, lat. isth. 16.

Habitat.— 1 (Figs. 94 y 95).

COSMARIUM Corda (1834)

C. binum Nordstedt in V/est et West (1908), p. 246, Lám. 88, Figs. 10-14.

long. cell. 62-70, lat. 45-50, lat. isth. 15-18.

Habitat.— 1,3 y 6.

C. bioculatum Brébisson in Ralís (1848), p. 95, Lám. 15, Fig. 5.

lena: cell. (12-13, lat. 11-12, lat. isth. 34,

Habitat.— 2.

C. botrylis Meneghini (1840), p. 220; West et West (1911), p. 1, Lám. 96,

Figs. 1 y 2.

long. cell. 44-46, lat. 38-40, lat. isth. 13-14.

Habitat.— 4 (Fig. 130).

C. blyttii Wille (1880) in Migula (1907), p. 475; West et West (1908), p. 255,

Lám. 86, Figs. 1-4.

long. cell: 17-18, lat. 16-17, lat. isth. 5-5.5.

Habitat.— 4,6 y 8 (Fig. 114).

C. clepsydra Nordstedt.

long. cell. 20-22, lat. 20-21, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 4 (Figs. 117,118 y 119).

C. connatum Brébisson in Ralís (1848), p. 108, Lám. 17, Fig. 10.

long. cell. 57-58, lat. 46-47, lat. isth. 43.

Habitat.— 1 y 6 (Fig. 123).

C. cucumis Corda ex Ralís (1834), p. 206, Lám. 2, Fig. 27; Ralís (1844), p.

395, Lám. 11, Fig. 8; Krieger et Gerloff (1962), p. 86, Lám. 19, Fig. 11.

long. cell. 42-44, lat. 25-26, lat. isth 7-8.

Habitat.— 3 (Fig. 120).

C. depressum (Naegeli) Lundell var. planctonicum Reverdin (1919), p. 95,

Figs. 94-104.

long. cell. 15, lat. 13-13.5, lat. isth. 4-4.5.

Habitat.— 4 (Figs. 100,101 y 102).

C. difficile Luetkemueller (1892), p. 551, Lám. 8, Fig. 3; West et West (1908),

p. 96, Lám. 73, Figs. 1-3.

long. cell. 22-26, lat. 14-15, lat. isth. 3-7.

Habitat.— 2,4 y 6 (Figs. 111 y 113).

C. elegantissimum Lundell (1871), p. 53, Lám. 3, Fig. 20; West et West

(1912), p. 40, Lám. 102, Fig. 19.

long. cell. 45-50, lat. 18-19, lat. isth. 16-17.

Habitat.— 1 (Figs. 127 y 128).

C. laeve Rabenhorst (1868), p. 161; West et West (1908), p. 7, Lám. 65,

Figs. 8,12,14,16 y 17.

long. cell. 28-30, lat. 25-26, lat. isth. 8.5-9,

Habitat.— 5 y 6 (Fig. 103).

C.laeve var. octangulare (Wille) West et West (1908), p. 101, Lám. 73,

Fig. 20.

long. cell. 22-24, lat. 15-16, lat. isth. 5-6.

Habitat— 1 (Fig. 104).

C. margaritiferum Meneghini (1840), p. 219, West et West (1908), p. 199,

Lám. 83, Figs. 4-9.

long. cell. 40, lat. 46, lat. isth. 125.

Habitat.— 4 (Fig. 129).

C. monomazum Lundell var. polymazum Nordstedt (1873), p. 14, Lám. 1,

Fig. 3; West et West (1908), p. 140, Lám. 76, Figs. 13 y 14.

long. cell. 36-37, lat. 42-43, lat. isth. 14-15.

Habitat.— 4.

C. ochthodes Nordstedt var. amoebum West (1892), p. 278; West et West

(1911), p. 11, Lám. 98, Figs. 4-£.

long. cell. 60-65, lat. 47-48, lat. isth. 12-13.

Habitat.— 1,6,7 y 8.

C. ornatum Ralís (1844), p. 392, Lám. 11, Fig. 3.

long. cell. 33-34, lat. 33-34, lat. isth. 12-13.

Habitat.— 4.

C. portianum Archer (1860), p. 49, Lám. 1, Figs. 8 y 9; West et West (1908),

p. 163, ém: 80; Figs. 4-7.

long. cell. 30-32, lat. 25-26, lat. isth. 8-9.

Habitat.— 6 (Fig. 131).

C. pseudopyramidatum Lundell (1871), p. 41, Lám. 2, Fig. 18; Krieger et

Gerloff (1965), p. 124, Lám. 26, Fig. 1.

long. cell. 60-63, lat. 40-42, lat. isth. 14-15.

Habitat— 1 y 2 (Fig. 122).

C. pyramidatum Brébisson in Ralís (1844), p. 94, Lám. 15, Fig. 4.

long. cell. 77-78, lat. 50-51, lat. isth. 17-18.

Habitat.— 5 (Fig. 121).

C. quadratum Ralís var. willei (Schmidle) Krieger et Gerloff (1969), p. 283,

Lam. 46, Figs: 5. y 6.

long. cell. 62-63, lat. 37-38, lat. isth. 18-19.

Habitat.— 9 (Fig. 116).

C. quadrifarium Lundell (1871), p. 32, Lám. 3, Fig. 12; West et West (1908),

p. 141, Lám. 76, Figs. 15-17, Lám. 77, Figs. 13.

long. cell. 64-65, lat. 47-48, lat. isth. 20-21.

Habitat— 3 y 7 (Figs. 125 y 126).

C. rectangulare Grunow var. cambrense (Turner) West et West (1896), p.

379; West et West (1908), p. 55, Lám. 70, Fig. 3.

long. cell. 22-23, lat. 15-16, lat. isth. 5-5.5.

Habitat.— 7 (Figs. 106 y 107).

C. regnellii Wille (1884), p. 16, Lám. 1, Fig. 34.

long. cell. 18-19, lat. 10-12, lat. isth. 4-6

Habitat.— 1,4 y 6 (Fig. 105)

C. subspeciosum Nordstedt var. validius Nordstedt (1887), p. 160; West

et West (1908), p. 253, Lám. 89, Figs. 12 y 13.

long. cell. 65-100, lat. 44-75, lat. isth. 17-25.

Habitat.— 1,6 y 7 (Figs. 124,132 y 133).

C. subtumidum Nordstedt var. borgei Krieger et Gerloff (1965), p. 163,

Lémm. 34, Fig; 1,

long. cell. 26-27, lat. 21-22, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 4 y 6 (Fig. 110).

C. tinctum Ralís (1848), p. 95, Lám. 32, Fig. 7.

long. cell. 15-17, lat. 12-13, lat. isth. 6-7.

Habitat.— 1 (Figs. 108 y 109).

C. trilobulatum Reinsch var. tumidum Krieger et Gerloff (1962), p. 101,

Lóm. 21, Fig.8.

long. cell. 27-30, lat. 22-25, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 1,2,5,6 y 8 (Figs. 112 y 115).

C. undulatum Corda ex Ralís var. minutum Wittrock (1869), p. 11, Lám. 1,

Fig. 3; Krieger et Gerloff (1962), p. 41, Lám. 11, Fig. 11.

long. cell. 18-20, lat. 15-16, lat. isth. 5-6.5.

Habitat.— 1 (Fig. 236).

XANTHIDIUM Ehrenberg (1837)

X. antilopaeum (Brébisson) Kuetzing (1849), p. 177; West et West (1911),

p. 63, Lám. 108, Figs. 7-18.

long. cell. s. acul. 52.5, long. cell. c. acul. 80, lat. s. acul. 55, lat. c. acul. 85,

lat. isth. 12.5.

Habitat.— 8 (Figs. 134 y 135).

X. smithii Archer (1860), p. 51, Lám. 1, Figs. 10-12; West et West (1911),

p. 61, Lám. 108, Figs. 1-4, Lám. 111, Fig. 10.

long. cell. s. acul. 30-32, lat. c. acul. 28, lat. isth. 910.

Habitat.— 4 y 7 (Fig. 136)

STAURODESMUS Teiling (1948)

Std. connatus (Lundell) Thomasson (1960), p. 34, Lám. 11, Fig. 16.

long tesis cacul. 17, long. cell. e. acul. 30, lat. Ss. “ecul. ls, lat. 1sth. E

Habitat.— 6 (Fig. 149).

Std. convergers (Ehrenberg) Teiling (1948), p. 57.

long. cell. 36-40, lat. s. acul. 45-48, long. acul. 15-17, lat. isth. 12-13.

Habitat.— 5.

Std. cuspidatus (Brébisson) Teiling. var. divergens.

lsng; cell..s. acul. 22-23, Jet..s. acul. 2021, long. acul. 5-6, lat. isth. 3.940:

Habitat.— 2 (Fig. 150).

Std. dejectus (Brébisson) Teiling (1954), p. 128; Teiling (1967), p. 529,

Eám. 9, Figs: 153.

long... cell.; s. acul.. 13-28, lat. s: acul., 24-25, long. acul. 3-8, lat. isth.. 36.

Habitat.— 2,4,5 y 6 (Fig. 148).

Std. dickiei (Ralfs) Lillieroth (1950), p. 264; Teiling (1967), p. 598, Lám. 29,

LOS LY

long. cell. 25-30, lat. s. acul. 22-23, long. acul. 3-6, lat. isth. 6-7

Habitat.— 1,4,6 y 9 (Figs. 161 y 162)

Std. extensus (Andersson) Teiling (1948), p. 67; Teiling (1967), p. 514, Lám.

Dias.» 17,18. y+aZi, Lóma. 31, Fig. 19

long! cell: "16-18; lat. %s. ¡acul. 15:16, late 'acul. 23-25; 1long. ecul Altar

isth. 4.5-5.5.

Habitat.— 45 y 6 (Figs. 140 y 141).

Std. glaber (Ehrenberg) Teiling (1948), p. 69; (1967), p. 597, Lám. 13, Fig. 16.

long. cell. 20-21, lat. c. acul. 24-26, lat. s. acul. 20-21, lat. isth. 6-7.

Habitat.— 4 (Fig 155)

Std. glaber var. debaryanus (Nozdstedt) Teiling (1967), p. 558, Lám. 14,

Flgs. 2.y 9.

long. cell. 15-20, left..s. acul. 15-17.5, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 1 (Figs. 151,152,153 y 154).

RS 7 UE

Std. glaber vaz. limnophilus Teiling (1967), p. 559, Lám. 14, Figs. 7-15.

long. cell. 21-22, lat. s. acul. 22-23, long. acul. 13-14, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 2 (Fig. 157)

Std. glaber var. hirundinella (Messikommer) Teiling (1967), p. 559, Lám.

14, Figs. 4 y 6.

long. cell. 17-18, lat. s. acul. 13-17, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 4 (Fig. 156).

Std. indentatus (West) Teiling (1948), p. 64, Figs. 31 y 32.

long. cell. 20-21, lat. s. acul. 15-16, long. acul. 22-23, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 8 (Figs. 169,170 y 171).

Std. mamillatus (Nordstedt) Teiling (1967), p. 536, Lám. 10, Figs. 5,8,11 y 12.

long. cell. 20-22, lat. s. acul. 13-15, lat. c. acul. 62, lat. isth. 6.5-7.

Habitat.— 4 y 8 (Fig. 146).

Std. patens (Nordstedt) Croasdale (1957), p. 134, Lám. 2, Figs. 32 y 33.

long. cell. 25-26, lat. 22, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 6 (Figs. 161 y 162).

Std. phimus (Turner) Thomasson (1959), p. 75, Lám. 23, Fig. 22.

long. cell. 17-23, lat. s. acul. 23-24, lat. c. acul. 27-29, lat. isth. 7.5-8.

Habitat.— 3 y 4 (Figs. 142,143,144 y 145).

Std. pinguis (Scott et Grónblad) Teiling (1967), p. 564, Lám. 17, Fig. 2.

long: cell. 33, lat. ¡c, .acul. 45, lat. isth. 12.

Habitat.— 6 (Fig. 158).

Std. sellatus Teiling (1948), p. 61, Figs. 45-50.

long. cell. 20-28, lat. s. acul. 15-22, long. acul. 10-11, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 4,6 y 8 (Figs. 163,164,165 y 166).

Std. spencerianus (Maskell) Teiling (1948), p. 67, Figs. 37 y 38; 42 y 43.

long. cell. 23-24, lat. s. acul. 17-18, long. acul. 10-12, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 7 y 8 (Figs. 167 y 168).

Std. triangularis (Lagerheim) Teiling (1948), p. 62, Figs. 63 y 64.

long. cell. 30-31, lat. s. acul. 24-25, long. acul. 15, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 2 y 4 (Fig. 147).

2 MA

ARTHRODESMUS Ehrenberg (1838)

Art. bifidus Brébisson (1856),p. 135, Lám. 1, Fig. 19; West et West (1911),

puts ni Elgs 11213.

leones cell S-16 Mat. 12:18) lat ivistho6:6:3:

Habitat.— 4 (Figs. 138 y 139).

Art. octocornis Ehrenberg (1838) p. 152; West et West (1911), p. 111, Lám.

Nvimbios: 6-10:

long. cell! s:“acul14215/ 1at*s:.acul12:1310n9'eicul. 49%, lar stamos

Habitat.— 1 (Fig. 137).

STAURASTRUM Meyen (1929)

St. alternans Brébisson in Ralís (1848), p. 132, Lám. 21, Fig. 7.

long. cell. 21-23, lat. c. proc. 26-28, lat. isth. 8-9.

Habitat.— 1,2,5 y 6.

St. asterias Nygaard in Krieger (1932), p. 193.

long. cell. s. proc. 24-26, lat. c. proc. 27, lat. isth. 10-11.

Habitat.— 1,2 y 6 (Figs. 191 y 192).

St. asterioideum West et West var. nanum (Wille) Grónblad (1948), p. 418,

Figs. 29 y +30.

long. cell. 2728, lat. c. proc. 25-26, lat. isth. 7-7.5.

Habitat.— 2 y 6.

St. avicula Brébisson in Ralfs var. subarcuatum (Wolle) West et West

(1894), p. 10; West, West et Carter (1923), p. 41, Lám. 133, Figs. 8-10.

long. cell. 30-32, lat. c. proc. 30-31, lat. isth. 12-13.

Habitat.— 6 (Figs. 205 y 206).

St. brebissonii Archer (1861), p. 739; West, West et Carter (1923), p. 6l,

ES blgs: 4 y 0.

long. cell. c. acul. 36-38, lat. c. acul. 32-35, long. acul. 2-3, lat. isth. 9-10.

Habitat.— 3,5 y 7 (Figs. 183 y 184).

St. dilatatum Ehrenberg in Ralís (1948), p 113, Lám. 21, Fig. 8.

long. cell. 26-30, lat. c. proc. 26-30, lat. isth. 8-10.

Habitat.— 1,2,3 y 6 (Figs. 176,177,178 y 179).

St. furcigerum Brébisson in Meneghini (1840), p. 226; West, West et Carter

(1923), p. 188, Lám. 156, Figs. 7y 11.

long. cell. s. proc. 30-32, long. cell. c, proc. 59-97, lat. e, proc. 47-49, lat.

isth. 12-13,

Habitat.— 1,4 y 6 (Fig. 230).

St. gladiosum Turner in West, West et Carter (1923), p. 57, Lám. 137,

Figs: 1-2,

long. cell. c. acul. 32-36, lat. c. acul. 34-35, long. acul. 5-6, lat. isth. 7.5-9.5.

Habitat.— 4 y 6 (Figs. 181 y 182).

St. gracile Ralís (1845), p. 155, Lám. 11, Fig. 3; Ralfs (1848), p. 136, Lám.

22, Elg 12

long. cell. s. proc. 20-21, lat. s. proc. 11-12, lat. c. proc. 34-35, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 4 (Figs. 208,209 y 210).

St. gracile var. nanum Wille (1880), p. 46, Lám. 2, Fig. 31; West, West et

Carter (1923), p. 100, Lám. 144 Figs. 8 y 9.

long. cell. 17-18, lat. c. proc. 22-23, lat. isth. 5-5.5.

Habitat.— 4 (Figs. 211 y 212).

St. inconspicuum ¡Nordstedt (1873), p. 26, Lám. 1, Fig. 11; West, West et

Carter (1923), p. 86, Lám. 141, Figs. 4-7, Lám. 142, Fig. 8.

long. cell. s. proc. 13-14, lat. c. proc. 16-17, lat. isth. 6-7.

Habitat.— 4 (Fig. 197).

St. laeve Ralís (1848);,p. ,131,.Lám. 23 Ei, 10:

lane cell. s. proc: 21222. lat.'c. proc. 15-16. lat ista leo

Habitat.— 6 (Figs. 185 y 186).

St. manfeldtii Delpin (1877), p. 160, Lám. 13, Figs. 6-19 West, West et

Carter (1923), p. 114, Lám. 148, Pig. 2.

“long. cell. 37-40, lat. c. proc. 47-50, lat. isth. 10-11.

Habitat.— 6 (Figs. 216 y 217).

St. manfeldtii var. annulatum West et West (1902), p. 56, Lám. 1, Figs.

30 y 31. ve

long. cell. 45, lat.c. proc. 50, laf, isth.. 10

Habitat.— 8 (Figs. 214 y 215).

E, EA

St. muticum Brébisson (1840) in West et West (1911), p. 133, Lám. 118,

Figs. 16-18.

long. cell. 26-27, lat. 18-19, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 6 (Figs. 172 y 173).

St. orbículare Ralís var. hibernicum West et West (1911), p. 156, Lám. 124,

Figs. 5-9.

long. cell. 37-64, lat. 35-52, lat. isth. 10-16.

Habitat.— 1 y 3 (Figs. 174 y 1705).

St. oxacanthium Archer vaz. polyacanthum Nordstedt (1885), p. 11, Lám.

7, Fig. 9 West, West et Carter (1923), p. 170, Lám. 143, Figs. 20-22.

long. cell. 45-47, lat. c. proc. 77-78, lat. isth. 12-20.

Habitat.— 3 y 7 (Figs. 220,221,222 y 223).

St. paradoxum Meyen var. parvum West (1892), p. 182, Lám. 23, Fig. 12;

West, West et Carter (1923), p. 105, Lám. 145, Fig. 6.

long. cell. 17-18, lat. c. proc. 32-33, lat. s. proc. 9-10, lat. isth. 4-5.

Habitat.— 4 (Figs. 203 y 204).

St. pinnatum Turnez var. reductum Krieger (1932), p. 204, Lám. 6, Fig. 9.

long. cell. 28-30, lat. c. proc. 34, lat. isth. 12.

Habitat.— 5 (Figs. 189 y 190).

St. polymorphium Brébisson in Ralfs (1848), p. 135, Lám. 22, Fig. 9; Lám.

34, Fig; 6.

lena, cello, 23-38, lat. e. proc. 18-23, lat. isth. 8-10,

Habitat.— 2,4,6 y 9 (Figs. 198,199,200,201 y 202).

St. pseudopelagicum West et West (1903), p. 547, Lám. 18, Figs. 1-3.

long. cell. s. proc. 25-26, lat. e. proc. 50-52, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 4 (Fig. 207).

St. punctulatum Brébisson in Ralís (1848), p. 133, Lám. 22, Fig. 1.

long. cell. 27-28, lat. 22-23, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 1,4 y 9 (Fig. 180).

St. quadrangulare Brébisson in Ralís var. contectum (Turner) Grónblad

(1945), p: 29 Lám.:12, Fig. 59.

long. cell. 25-26, lat. c. proc. 25-26, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 4 (Figs. 187 y 188).

e. 9 E

St. rotula Nordstedt (1870), p. 227, Lám. 4, Fig. 38.

long. cell. 37-38, lat. c. proc. 65-70, lat. isth. 10-11.

Habitat.— 4,6 y 8 (Figs. 227,228 y 229).

St. subavicula West et West (1894), p. 12.

long. cell. 27-28, lat. c. proc. 27-28, lat. isth. 10-11.

Habitat.— 6 (Figs. 195 y 196).

St. subpolymorphum Borge (1203), p. 107, Lám. 7, Fig. 13.

long. cell. 27-28, lat. s. proc. 16-17, lat. c. proc. 32-33, lat. isth. 7-8.

Habitat.— 5 (Figs. 193 y 194).

St. tetracerum Ralís (1845), p. 150, Lám. 10, Fig. 1.

long. cell. 26-28, lat. c. proc. 25, lat. isth. 5-6.

Habitat.— 6 (Fig. 213).

St. tohopekaligerese Wolle (1885), p. 128, Lám. 51, Figs. 4 y 5.

long. cell. s. proc. 24-26, lat. s. proc. 18-19, lat. c. proc. 45-46, lat. isth. 10-12.

Habitat— 4 y 6 (Fig. 226).

St. triforcipatum West et West 1901, p. 184.

long. cell. 27-28, lat. c. proc. 3335, lat. isth. 6-7.

Habitat.— 4,6 y 8 (Figs. 218 y 219).

HYALOTHECA Ehrenberg (1841)

H. dissiliens (Smith) Brébisson in Ralís (1848), p. 51, Lám. 1, Fig. 1.

long. cell. 15-17, lat. 20-24, lat. isth. 22-23.

Habitat.— 4,5 y 8 (Fig. 231).

BAMBUSINA Kuetzing (1845)

B. brebissonii Kuetzing (1845), p. 140; Fórster (1985), p. 158, Lám. 9, Figs.

28 y 29.

long. cell. 26-30, lat. 20-21, lat. ap. 12.

Habitat.— 5 (Fig. 232).

TEILINGIA Bourrelly (1964)

T. granulata (Roy et Bisset) Bourrelly (1964), p. 189, Fig. 9.

long. cell. 10-11, lat. cell. 10, lat. isth. 4-5.

Habitat.— 4 y 6 (Fig. 233).

DESMIDIUM Agardh (1824)

D. cylindricum Greville (1827) in West, West et Carter (1923), p. 249, Lám.

164,519. y 8.

long. «cell. 25, lat. 50, lat.* isth. +40.

Habitat. — 5 (Figs. 234 y 235).

AN Ñ

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Isla de Chiloé. Ubicación de los lugares estudiados.

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Pig. at

Fig. 4:

Pig. ho:

Figs 6,/,8 y Y

Fig. 10:

Cylindrocystis brebissont

Netrium digitus

Netrium digitus var. naegel

Netrium digitus var. rhomboideum

Netrium digitus var. parvum

Netrium interruptum

A =

RASO

Po a

SISSI

SS)

Bio Ll: Gonatozygon kinahani

Bios 12 y 13: Gonatozygon brebissonú

Figs. 14,15 y 16: Gonatozygon aculeatum

EG. W7: Netríium oblonaum

Fig. 18: Penium margaritaceum

Figs. 19,20 y 21: Penium sprrostriolatum

Figs. 22) y 23: Penium spinospermum

Eig: +22: Penium silvae-nigrae

E MA

—

EEE SS

ESSE MS == A >

e ARAU ARA

E Ml

FXIZIIZSSOISSSSSSSS5S E SS55S

A SAG

SS SA,

=> 1

18 ,19,20 ,21

04, 22,23

= AE

Figs. 25,26 y 27: Closterium montliferum

Fig: 28: Closterium moniliferum var. CoOnCcavum

Fig. “29 Cloterium leibleimú

Fig. * :30: Closterium malinvernianiforme

—=

—

— 47 —

Figs. 31 y 32: Closterium dianae

Figs. 33 y 34:

Elgs:. 99 y 30:

oy 537:

Fig. 38:

Closterium dianae var. brevius

Closterium parvulum

Closterium parvulum var. angustum

Closterium venus

— AQ

Figs.

Fig.

39 y 40: Closterium

41:

42:

43:

44:

40:

Closterium

Closteríum

cynthia

cynthia var. robustum

cynthia var. latum

parvulum

libellula var. interruptum

ACerosum

¡ANRAAS |

NA TV SY |

Bigs.

ELE

Figs.

Fig.

46 y 47: Closterium gracile

48: Closterium abruptum

49 y 50: Closterium kuetzingú

Sl: Closterium toxon

59: Closterium cornu

E A

47,50:

Du, 46,48

Ou, 49

Figs. 53,54 y 55: Closterium pritchardianum

Figs. 56,57 y 59: Closterium praelongum var. porosum

Figs. 58 y 60: Closterium delpontet

o A

Figs. 61 y 62: Closterium striolatum

Fig. 63: Closterium intermedium

Figs. 64 y 65: Closterium ralfsii

Figs. 66,67,68 y 69: Closterium costatum

Qooo.r...o,

—31—

¿ln

Fig.

Figs.

Ele

Figs.

70: Closterium malmei var. semicirculare

JM: Closterium malmet

72: Pleurotaentum minutum var. latum

73 y 75: Pleurotaentum trabecula

74: Pleurotaenium trabecula var. rectum

76 y 77: Pleurotaenium ehrenbergúl

Figs. 78,79 y 80: Tetmemorus laevis

Ela: Vel: Euastrum attenuatum var. lithuanicum

Fig. 82: Euastrum oblongum

250-=

Fig. 83: Euastrum denticulatum

Figs. 84 y 85: Euastrum obesum

Fig. 86: Euastrum sinuosum var. marchesoni

Fig. 87: Euastrum evolutum var. glaziowuú

ie, 88: Euastrum dubium

Fig. 89: Euastrum pulchellum var. protrusum

Fig. 90: Euastrum binale

a Euastrum binale var. sectum

... a

Fig. 92: Micrasterias rotata

Fig. 93: Micrasterias papillifera

Figs. 94 y 95: Actinotaenium cucurbitinum var. minus

Figs. 96 y 97: Actinotaentum cucurbita

Fig, 98: Actinotaentum cruciferum

Fig. 99: Actinotaentum clevel

Figs.

Fig;

Fig.

Bigs.

Figs.

Fig.

Figs.

Fig.

Fig:

Figs.

100,101 y 102:

103:

104:

105:

106-y 10%

108 y 109:

110:

11 118:

112 115:

114:

116:

MAS y 119:

Cosmarium

depressum var. planctonicum

laeve

laeve var. octangulare

regnellii

rectangulare var. cambrense

tinctum

subtumidum var. borgel

difficile

trilobulatum var. tumidum

blyttil

quadratum var. willei

clepsydra

119

Da, 100,101, 102

10%, 103 116

—04 —, 104,105,106,107,108

109'110,111/113

— Y 112,114,115,117

Fig. 120: Cosmarium cucumis

Fig. 121: Cosmarium pyramidatum

Fig. 122: Cosmarium pseudopyramidatum

Fig. 123: Cosmarium connatum

e ME

Fig. 124: Cosmarium subspeciosum var. validius

Figs. 125 y 126: Cosmarium quadrifarium

Figs. 127 y 128: Cosmarium elegantissumum

6 60 00 04 0

70 O

Y AS

Wa e

a £

a o

-—H—

Pig.

ia:

Fig.

Figs.

Fig.

129:

130:

131:

18247183:

236:

Cosmarium margaritiferum

Cosmarium botrytis

Cosmarium portianum

Cosmarium subspeciosum var. validius

Cosmarium undulatum var. minutum

a AO

BL, 236

o Lal

a Q

00040 000

sl S“QO0o O

236

— 73 —

Figs. 134 y 135: Xanthidium antilopacum

E. 180 Xanthidium smith

Rie, 187: Arthrodesmus octocornis

Figs. 138 y 139: Arthrodesmus bifidus

db E

275

pla 134

Da, 135

Ou, 136

34,137, 138,139

135

Figs. 140 y 141: Staurodesmus

Figs. 142,143,144

Fig.

y 145:

146:

147:

148:

149:

150:

Staurodesmus

extensus

phimus

mamillatus

triangularis

dejectus

connatus

cuspidatus var. divergens

Me REA

140

42) | 143 144

145 148

149

147

146

2 140, 141,146

34, 144,145, 149

04, 147,148

24, 150

Figs. 151,152,153

y 154: Staurodesmus glaber var. debaryanus

lg. uo: Staurodesmus glaber

Ea. 156: Staurodesmus glaber var. hirundinella

hia. .lo/: Staurodesmus glaber var. limnophilus

Fig. -198: Staurodesmus pinguts

Figs. 159 y 160: Staurodesmus dickiei

Figs. 161 y 162: Staurodesmus patens

DA, 160 fa

A, 161

161

160

162

— DL 151,152 ,153,156

154,

A, 155

04,157,162

—04, 158, 159

Figs. 163,164,165 Staurodesmus sellatus

y 166:

Figs. 167 y 168: Staurodesmus spencerianus

Figs. 169,170 y 171: Staurodesmus indentatus

—— 04,163, 166

169 Ob, 164,165

DA, 167 ,168

— 04, 169,170,171

Figs. 172 y 173: Staurastrum muticum

Figs. 174 y 175: Staurastrum orbiculare var. hibernicum

Figs. 176,177,178 Staurastrum dilatatum

y 179:

Fig. 180: Staurastrum punctulatum

— NR

VES

172

A, 172

4, 173,174,,17

2,176 ,177

( 24,178 ,179 0

¡Gap

Figs.

181 y, 182:

183 y 184:

185 y 186:

187, y 188:

199 y 190:

Staurastrum gladiosum

Staurastrum brebissonú

Staurastrum pinnatum var. reductum

Staurastrum quadrangulare var. contectum

Staurastrum laeve

185

[0]

ES]

e y

52932

e m

S a]

04, 185 186,189

190

Figs. 191 y 192: Staurastrum asterias

Figs. 193 y 194: Staurastrum subpolymorphum

Figs. 195 y 196: Staurastrum subavicula

Ho 197: Staurastrum inconspicuum

AMB ==

4 191,192

197 as 193, 194

LM, 195,196

Da, 197

195

193

194

Pi =—

Figs. 198,199,200, Staurastrum polymorphum

201 y 202:

Figs. 203 y 204: Staurastrum paradozum var. parvum

Figs. 205 y 206: Staurastrum avicula var. subarcuatus

24, 198,199, 200

o, 20/202,203

205,206

Fig. 207: Staurastrum pseudopelagicum

Figs. 208,209 y 210: Staurastrum gractle

Eigs. 2117202: Staurastrum gracile var. nanum

Elgs 213: Staurastrum tetracerum

wendy El ica

>El

212

_ 4 207

34, 208, 209,210

104, 211,212

210 10M, 213

Figs. 214 y 215: Staurastrum manfeldtíi var. annulatum

Figs. 216 y 217: Staurastrum manfeldti

Figs. 218 y 219: Staurastrum triforcipatum

e A

214,215

04, 216,217

,219

218

Figs. 220,221,222 Staurastrum oxyacanthum var.

YA 223 polyacanthum

Figs. 224 y 225: Staurastrum subavicula

A, 220,221

224,225

ADA, 222,223

Fig: “220: Staurastrum tohopekaligense

Figs. 227,228 y 229: Staurastrum rotula

Fig 230: Staurastrum furcigerum

To E

104,227 228 229

04 230

Fig.

Figs.

Z3L: Hyalotheca dissiliens

232: Bambusina brebissonil

233: Teilingia granulata

234 y 235: Desmidium cylindricum

o: EZ

e, 231

HOM, 232, 233,234,235

INDICE DE TAXA

Actinotaentum

clevei, 7,10,21,64

cruciferum, 10,22,64

cucurbita, 7,10,22,64

cucurbitinum ífma. minus, 7,10,64

Arthrodesmus

bifidus, 7,12,28,74

octocornis, 12,28,74

Bambusina

brebissonti, 13,31,98

Closterium

abruptum, 9,16,52

acerosum, 9,16,50

calosporum, 9,16

cornu, 7,9,16,52

costatum, 7,9,16,56

cynthia, 9,16,50

cynthia var. robustum, 7,9,16,50

cynthia var. robustum. 7,9,16,50

delpontei, 9,16,54

dianae, 9,17,48

dianae var. brevius, 9,17,48

ehrenbergú var. malinvernianum, 9,17

gracile, 9,17,52

intermedium, 7,9,17,56

kuetzingit, 9,17,52

leibleinú, 9,17,46

libellula, 9,17,50

libellula var. interruptum, 9,17

Closterium

malinvernianiforme, 7,9,18,46

malme?, 9,18,58

malmel var. semicirculare, 7,9,18,58

montliferum, 9,18,46

moniliferum var. concavum, 7,9,18,46

parvulum, 9,18,48,50

parvulum var. angustum, 9,18,48

praelongum var. porosum, 7,9,18,54

pritchardianum, 9,18,54

ralfsti, 9,19,56

striolatum, 9,19,56

toxon, 10,19,52

— 100 —

turgidum, 10,19

venus, 10,19,48

Cosmarium

binum, 10,22

bioculatum, 10,22

blyttit, 11,22,66

botrytis, 10,22,72

clepsydra, 7,11,22,66

connatum, 11,22,68

cucumis, 11,23,68

depressum var. planctonicum, 11,23,66

difficile, 11,23,66

elegantissimum, 7,11,23,70

laeve, 11,23,66

laeve var. octangulare, 11,23,66

margaritiferum, 7,11,23,72

monomazum var. polymazum, 11,23

ochthodes var. amoebum, 11,23

ornatum, 11,24

portianum, 11,24,72

pseudopyramidatum, 11,24,68

pyramidatum, 11,24,68

quadratum var. willei, 7,11,24,66

quadrifarium, 11,24,70

rectangulare var. cambrense, 7,11,24,66

regnellii, 11,24,66

subspeciosum var. validius, 11,25,70,72

subtumidum var. borgei, 11,25,66

tinctum, 11,25,66

trilobulatum var. tumidum, 11,25,66

undulatum var. minutum, 7,11,25,72

Cylindrocystis

brebissonil, 8,14,40

Desmidium

cylindricum, 13,32,98

Euastrum

attenuatum var. lithuanicum, 10,20,60

binale, 10,20,62

binale var. sectum, 10,20,62

denticulatum, 10,20,62

dubium, 10,20,62

evolutum var. glaziowii, 10,21,62

obesum, 7,10,21,62

oblongum, 10,21,60

pulchellum var. protrusum, 7,10,21,62

sinosum var. marchesoni, 7,10,21,62

Gonatozygon

aculeatum, 8,15,42

— 101 —

Micrasterias

papillifera, 7,10,21,64

rotata, 10,21,64

Netrium

digitus, 8,14,40

digitus var. naegelli, 7,8,14,40

digitus var. parvum, 7,8,14,40

digitus var. rhomboideum, 7,8,14,40

interruptum, 8,14,40

oblongum, 7,8,14,42

Penium

margaritaceum, 9,15,44

silvae-nigrae, 7,9,15,44

spinospermum, 7,9,15,44

spirostriolatum, 9,15,44

Pleurotaenium

ehrenbergí, 10,19,58

minutum var. latum, 7,10,19,58

trabecula, 10,19,58

trabecula var. rectum, 10,20,58

Staurastrum

alternans, 12,28

asterias, 12,28,86

asterioideum var. nanum, 12,28

avicula var. subarcuatum, 12,28,88

brebissonii, 12,28,84

dilatatum, 12,28,82

furcigerum, 12,29,96

gladiosum, 12,29,84

gracile, 12,29,90

gracile var. nanum, 7,12,29,90

imconspicuum, 12,29,86

laeve, 12,29,84

manfeldtii, 7,12,29,92

manfeldtiíi var. annulatum, 12,29,92

muticum, 12,30,82

orbiculare var. hibernicum, 7,12,30,82

oxyacanthum var. polyacanthum, 8,12,30,94

paradozxum var. parvum, 12,30,88

pinnatum var. reductum, 12,30,84

polymorphum, 13,30,88

pseudopelagicum, 8,13,30,90

punctulatum, 13,30,82

quadrangulare var. contectum, 13,30,84

rotula, 13,31,96

brebissonii, 8,15,42

kinahani, 8,15,42

Hyalotheca

dissiliens, 13,31,98

— Ob =

subavicula, 8,13,31,86,94

subpolymorphum, 13,31,86

tetracerum, 13,31,90

tohopekaligense, 13,31,96

triforcipatum, 8,13,31,92

Staurodesmus

connatus, 7,11,26,76

convergens, 11,26

cuspidatus var. divergens,

dejectus, 11,26,76

dickiei, 11,26,78

extensus, 11,26,76

glaber, 7,12,26,78

11,26,76

glaber var. debaryanus, 7,12,26,78

glaber var. hirundinella, 7,12,27,78

glaber var. limnophilus, 7,12,27,78

indentatus, 7,12,27,80

mamillatus, 12,27,76

patens, 12,27,78

phimus, 12,27,76

pinguis, 7,12,27,78

sellatus, 7,12,27,80

spencerianus, 7,12,27,80

triangularis, 12,27,76

Teilingia

granulata, 13,32,98

Tetmemorus

laevis, 10,20,60

Xanthidium

antilopaeum, 11,25,74

smithii, 11,25,76

— 103 —

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE LA IMPRENTA DE

LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE),

EL 20 DE DICIEMBRE DE 1977.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

INSTITUTO DE BIOLOGIA

“OTTMAR WILHELM GROB”

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

CASILLA 301 — CONCEPCIÓN

CHILE

EDITORIAL UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

BCGAYANA

BOTANICA 1979 No 35

DIATOMEAS RECOLECTADAS EN LAS

DESEMBOCADURAS DE LOS RIOS

CHIVILINGO, LARAQUETE Y

CARAMPANGUE, CHILE

por

P. RIVERA Y H. VALDEBENITO

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

- MN a

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Ñ 5 | ¿E LA PH?

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3 e % ej py Rh y PP.

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tn . l ra o

A ESA Ea

y a PA br

INSTEIEUTO DEFBLOTOGIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

EDITOR

Patricio Rivera R.

COMITE EDITOR

Oscar Matthei J.

Jorge N. Artigas C.

Lajos Biro B.

COMITE TECNICO

Miren Alberdi

Universidad Austral, Valdivia

Sergio Avaria

Depto. de Oceanología, Montemar

Nibaldo Bahamonde

Museo Nacional de Historia Natural Santiago

Danko Brncic

Universidad de Chile, Santiago

Eduardo Bustos

Universidad de Chile, Santiago

Hugo Campos

Universidad Austral, Valdivia

Juan C. Castilla

Universidad Católica, Santiago

Eduardo del Solar

Universidad Austral, Valdivia

Clodomiro Marticorena P.

Víctor A. Gallardo

Waldo Venegas S.

Raúl Fernández

Universidad de Chile, Santiago

Luis Ramorino

Depto. de Oceanología, Montemar

Jorge Redón

Universidad de Chile, Valparaíso

Bernabé Santelices

Universidad Católica, Santiago

Federico Schlegel

Universidad Austral, Valdivia

José Stuardo

Depto. de Oceanología, Montemar

Haroldo Toro

Universidod Católica, Valparaíso

DO A

EA Y IA

BOTANICA 1979 N2 35

DIATOMEAS RECOLECTADAS EN LAS DESEMBOCADURAS DE

LOS RIOS CHIVILINGO, LARAQUETE Y CARAMPANGUE, CHILE.

por

P. RIVERA* y H. VALDEBENITO*

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente

conocerse sino luego que los sabios del país hagan un

especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, 1 : 14 (1848).

DIATOMEAS RECOLECTADAS EN LAS DESEMBOCADURAS DE

LOS RIOS CHIVILINGO, LARAQUETE Y CARAMPANGUE, CHILE.

por

P. RIVERA* y H. VALDEBENITO*

RESUMEN

Se estudiaron las diatomeas (Bacillariophyceae) recolectadas durante

el año 1977 en las desembocaduras de los ríos Chivilingo, Laraquete y Ca-

rampoangue. Se determinaron 139 taxa agrupados en 104 especies, 30 va-

riedades y 5 formas pertenecientes a 50 géneros. Doce taxa se señalan por

primera vez para Chile, y para cada uno de los taxa encontrados se en-

trega referencias sobre su ecología y distribución en el país. Dibujos, fo-

tomicrografías, diagnosis y comentarios sobre la morfología o sistemática

complementan el estudio de los taxa menos conocidos.

SUMMARY

Phytoplankton samples collected during 1977 at the mouths of the

Chivilingo, Laraquete and Carampangue rivers were analysed by light and

transmission electron microscopy.

One hundred and thirty-nine taxa belonging to 50 genera were found

distributed in 104 species, 30 varieties and 5 forms. Twelve of the taxa

are new records for Chile.

Ecological information, distribution, drawings and light or electron micro-

graphs are given for each taxon. The description and taxonomy of the lesser

known species is discussed.

INTRODUCCION

Durante el año 1977, y con la ayuda de alumnos del Instituto de Bio-

logía de la Universidad de Concepción, se recolectó varias muestras de

fitoplancton en las cercanías de las desembocaduras de los Ríos Chivilin-

go, Laraquete y Carampangue. El análisis de estas muestras reveló un

* Departamento de Botánica, Universidad de Concepción, Casilla 1367, Concepción,

CHILE.

alto contenido de frústulos de diatomeas, algunas de las cuales no eran

aún conocidas para el país, razón por la cual entregamos aquí los resulta-

dos de dicho análisis dando un paso más en el conocimiento global de las

diatomeas chilenas.

En general las aguas costeras interiores de Chile han sido pobremente

estudiadas, y en particular para el área ahora trabajada, sólo existe la

publicación de Rivera (1978) donde se describen dos nuevos taxa (Stauro-

neís araucana Rivera, desembocadura de los ríos Laraquete y Chivilingo, y

Cymbella hauckii var. chilensis f. stigmata Rivera en el río Laraquete) y

se señala a otros dos por primera vez para esa misma zona (Detonula pu-

mila (Castracane) Schútt y Actinocyclus curvatulus Janisch).

Los ríos muestreados están situados entre los 37%08'S y los 37%14'S, en

las provincias de Concepción y Arauco (Fig. 1). El río Chivilingo, localizado

en la provincia de Concepción (37”08'S, 73210"W), es angosto y accesible

para botes sólo con marea creciente, de corto curso y caudal. Corre entre

elevados y boscosos cerros y se vacia finalmente en el mar en la llamada

ensenada de Chivilingo, de la Bahía de Arauco. Un poco más al sur, y ya

en la provincia de Arauco, se encuentra el Río Laraquete (37*10'S, 73911"W).

Es de corto curso y mediano caudal y se origina en las laderas occidenta-

les de la parte norte de la Cordillera de Nahuelbuta. En su desembocadura

se mezcla la playa arenosa con la costa rocosa de la Punta Laraquete; las

mareas tienen notoria acción sobre este río, el cual durante la pleamar

inunda las vegas cercanas.

Aún más al sur y a unos 11 kilómetros de Laraquete se encuentra el

Río Carampangue o Río Raghco, como se le conocía durante los primeros

tiempos de La Conquista (37%14'S, 73217'W). Tiene unos 65 kilómetros de

longitud y unos 620 km? de hoya hidrográfica, y se origina también de los

faldeos occidentales de la Cordillera de Nahuelbuta; corre entre bosques

con un curso cambiante y se vacia por fin al SE de la Bahía de Arauco,

a corta distancia del pueblo de Carampangue. Las mareas también se

hacen sentir desde su parte inferior y solamente puede ser navegado por

embarcaciones pequeñas.

Las localidades y habitats de los cuales se obtuvieron las muestras han

sido colocados en la siguiente lista (Vea también la fig. 1):

Muestra 1.— 28.3.1977, Río Chivilingo, cerca de la desembocadura, 16C,

plancton.

Muestra 2.— 11.4.1977, Río Chivilingo, bajo el puente carretero, 15%C, planc-

ton.

Muestra 3.— 28.3.1977, Río Laraquete, bajo el puente carretero, 19*C, planc-

ton.

Muestra 4.— 28.3.1977, Río Laraquete, cerca de la desembocadura, 14*C,

plancton.

Muestra 5.— 28.3.1977, Río Laraquete, desembocadura, 13”C, plancton.

Muestra 6.— 11.4.1977, Río Laraquete, cerca de la desembocadura, 13*C,

plancton,

73 15?

y CORONEL

pi LOTA

Pi > SE

Río Chivilingo

9 )

Río Laraquete

EST. 8-10

ARAUCO

(ECARAMPANGUE

Río Carampangue

ESCALA 1:250.000

Fig. 1. Lugares de recolección del material (estaciones 1-10) en los ríos Chivilingo,

Laraquete y Carampangue.

Muestra 7.— 11.4.1977, Río Laraquete, bajo el puente carretero, 15%C, planc-

ton.

Muestra 8.— 28.3.1977, Río Carampangue, bajo el puente en el camino en-

tre Carampangue y Arauco, 17”C, plancton.

Muestra 9.— 11.4.1977, el mismo lugar, 15%C, plancton.

Muestra 10.— 11.4.1977, Río Carampangue, poza cercana al puente carre-

tero entre Carampangue y Arauco, 219C, raspado del fondo y plancton.

Los resultados aquí obtenidos constituyen un aporte más al conoci-

miento de la flora diatomoléógica chilena, y han sido logrados gracias a un

trabajo paciente y minucioso, haciendo uso de abundante bibliografía, equi-

pos y material de comparación.

Los autores expresan su sincero agradecimiento al Departamento de

Polímeros del Instituto Central de Química y a la Vicerrectoría de Investi-

gación de la Universidad de Concepción, por las facilidades otorgadas

para trabajar con el microscopio electrónico de transmisión a su cargo.

Agradecemos también a los señores Raúl Alarcón por el manejo directo

de dicho microscopio, y Nelson Moya, dibujante artístico del Departamento

de Botánica, por la confección de los dibujos.

MATERIALES Y METODOS

Microscopio fotónico

Para la eliminación de la materia orgánica de los frústulos se siguió

el método descrito por Hasle «4 Fryxell (1970), montándose finalmente el

material en Hyrax.

Las observaciones se realizaron en un Microscopio Zeiss Standard RÁ

provisto de un fototubo binocular con prisma deslizante, un condensador

de contraste de fase, un cambiador de aumentos OPTOVAR y una lámpara

de iluminación de 100 watt.

Los dibujos se hicieron con ayuda de una cámara clara y las fotogra-

fías se obtuvieron con el equipo Zeiss C 35 Cs matic de control automático,

utilizándose un filtro verde y película Agfa-Gevaert de 17 DIN.

La línea que aparece en las láminas acompañado a los dibujos y/o

fotografías indica, si no se señala otro valor, una longitud de 10 um.

Microscopio electrónico de transmisión

Se utilizó un aparato Philips EM 200 perteneciente a la Universidad de

Concepción y en el cual se trabajó a 60 KV. Las rejillas de cobre de 3 mm

de diámetro y malla 300 fueron cubiertas con una solución al 0.6% de

Formvar en cloroformo. La película utilizada en las fotografías fue del tipo

Agfa-Gevaert de 14 y 17 DIN.

Abundancia relativa

El grado de abundancia relativa de los taxa se determinó en sub-

muestras haciéndose uso de la siguiente escala:

Raro (R): 1-2 células o filamentos por submuestra.

Común (C): 3-10 células o filamentos por submuestra.

Abundante (A): 11 o más células o filamentos por submuestra.

El material utilizado en este estudio ha sido ingresado a la Colección

Diatomológica del Departamento de Botánica de la Universidad de Con-

cepción (DIAT-CONC), Chile.

RESULTADOS

Un total de 139 taxa de diatomeas fueron determinados en el area

muestreada, los cuales comprenden 104 especies, 30 variedades y 5 formas.

Todos son señalados por primera vez para el área estudiada, a excepción

de Stauroneis araucana Rivera, Cymbella hauckit var. chilensis f. stig-

mata Rivera, Detonula pumila (Castracane) Schitt y Actinocyclus cur-

vatulus Janisch que ya fueron indicados por Rivera (1978).

Se señala por primera vez para Chile a los siguientes 12 taxa:

Gomphonema herculeanum var. robustum Grunow

Gomphonema herculeanum var. septiceps Schmidt

Gyrosigma terryanum f fontanum Reimer

Navicula bahusiensis (Grunow) Grunow

Navicula directa var. lata Ostrup

Navicula gottlandica Grunow

Navicula viridula var. linearis Hustedt

Nitzschia ignorata Krasske

Pinnularia intermedia var. hybrida (Cleve-Euler) Cleve-Euler

Pleurosigma salinarum Grunow

La lista completa de los taxa, su abundancia relativa y las muestras

donde fueron encontrados es la siguiente:

TAX E Chivilingo Laraquete Carampangue

* indica primera citación para Chile EE 3455657 8 9 10

Achnanthes affinis Grunow R-= R-=--- RRR

exigua Grunow === --R

hauckiana Grunow var.

rostrata Schulz

lanceolata var. dubiía Grunow

pinnata Hustedt

temperei M. Peragallo

R R

)

'o oo olas)

mu!

)

odo

TAXA

X* indica primera citación para Chile

Actinocyclus curvatulus Janisch

subtilis (Gregory) Ralís

Actinoptychus senarius (Ehrenberg)

Ehrenberg

Amphipleura lindheimeri Grunow var.

neotropica Frenguelli

rutilans (Trentepohl) Cleve

Amphora exigua Gregory

ovalis var. libyca (Ehrenberg) Cleve

splendida Rivera

Asterionella formosa Hassall

Bacillaría paxillifer (O. Miller) Hendey

Bacteriastrum sp.

Biddulphia aurita var. obtusa

(Kutzing) Hustedt

longicruris var. hyalina

(Schroder) Cupp

Caloneis westú (Smith) Hendey

Campylodiscus fastuosus Ehrenberg

Ceratoneis arcus (Ehrenberg) Kiitzing

var. arcus

arcus var. amphioxys

(Rabenhorst) Brun

Chaetoceros constrictus Gran

debilis Cleve

diadema (Ehrenberg) Gran

didymus Ehrenberg

eibenú Grunow

lorenzianus Grunow

radicans Schutt

socialis Lauder

Cocconeis californica var. lengana Rivera

costata Gregory var. costata

costata var. hexagona Grunow

placentula var. euglypta

Ehrenberg) Cleve

Coscinodiscus janischii Schmidt

marginatus Ehrenberg

perforatus var. cellulosa Grunow

stellaris Roper

-Cyclotella meneghiniana Kitzing

Cymbella hauckii var. chilensis f

stigmata Rivera

minuta Hilse

naviculiformis Auerswald

pusilla Grunow

Chivilingo

1.2

Ro en By OCA

R -

PALO

| |

Laraquete

Carampangue

Bt a BR

Ligan Jo NL JALEA A > +

DIT

De DUNA A a

E o! DE ¡UA AA AA

2.0)

bo JE

9 10

TAXA

* indica primera citación para Chile

Chivilingo

1... 2

sinuata Gregory

tumida (Brébisson) Van Heurck

Denticula subtilis Grunow

Detonula pumila (Castracane) Schútt

Diatoma tenue Agardh

Diploneis chersonenmsis (Grunow) Cleve

ovalis (Hilse) Cleve

subovalis Cleve

Entopyla australis (Ehrenberg) Ehrenberg

Epithemia zebra (Ehrenberg) Kútzing

Eunotia major (Wm. Smith) Rabenhorst

tenella (Grunow) Hustedt

Fragilaria vaucheriae (Kiútzing) Petersen

Frustulia rhomboides (Ehrenberg)

De Toni var. rhomboides

rhomboides var. saxonica

(Rabenhorst) De Toni

vulgaris (Thwaites) De Toni

Gomphonema hebridense Gregory

herculeanum var. robustum* Grunow

herculeanum var. septiceps* Schmidt

parvulum (Kútzing) Kútzing

pseudoexiguum Simonsen

Grammatophora angulosa Ehrenberg

marina (Lyngbye) Kitzing

Gyrosigma balticum (Ehrenberg) Rabenhorst

eximioides Rivera

terryanum f. fontanum* Reimer

Hantzschia virgata (Roper) Grunow

Hyalodiscus kerguelensis Karsten

Licmophora abbreviata Agardh

juergensii* Agardh

Melosira granulata var. angustissima

Miller

nummuloides (Dillwyn) Agardh

sol (Ehrenberg) Kitzing

varians Agardh

Meridion circulare var. constricta

(Ralfs) Van Heurck

Navicula auriculata Hustedt

bahusiensis* (Grunow) Grunow

cryptocephala Kiitzing

var. cryptocephala

cryptocephala var. veneta

(Kitzing) Rabenhorst

(Eo e as

! !

Laraquete Carampangue

2-0: hi8: 1

O >

RCCAA

ho A $

Ro _- =.-

R mui ye

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Ro - -

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R= - .- -

15 AR

+1 20R Bak

Ryo Bv Ah

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Ri-=43 43%

==> -

42/5585 RMS

Bowser

R= == -

GF mm

Ro o=1= 202

[OU =43

g 10

FQOOAJD., » NR NS

TARA

* indica primera citación para Chile

cuspidata (Kútzing) Kiútzing

var. cuspidata

cuspidata var heribaudíi Peragallo

dicephala var. undulata Ostrup

directa var. lata* Ostrup

gottlandica* Grunow

lateropunctata Wallace

mutica Kitzing

palpebralis Brébisson ex. Wm. Smith

pseudoreinhardti* Patrick

pupula var. rectangularis

(Gregory) Grunow

pygmaea Kitzing

rhynchocephala Kitzing

var. rhynchocephala

rhynchocephala var. amphiceros

(Kutzing) Grunow

spectabilis Gregory

stankovici var. chilensis Rivera

viridula (Kitzing) Kútzing

emend. Van Heurck var. viridula

viridula var. linearis* Hustedt

viridula var. rostellata

(Kútzing) Cleve

Neidium bisulcatum var. baicalense

(Skv. € Meyer) Reimer

Nitzschia acicularis (Kitzing)

Wm. Smith

amphibiía Grunow

apiculata (Gregory) Grunow

dissipata (Kitzing) Grunow

1gnorata* Krasske

parvula Lewis

pseudoseriata Hasle

pungens Grunow emend. Hasle

sigma (Kútzing) Wm. Smith

Opephora martyi Heribaud

Pinnularia borealis Ehrenberg

brevicostata var. intermedia

f. cuneata Rivera

divergens Wm. Smith

intermedia var. hybrida*

(Cleve-Euler) Cleve-Euler

latevittata f medioconstricta

(Font.) Cleve-Euler

major (Kutz.) Rabenhorst

Chivilingo

192

QUID

LQRÁDD go!

Laraquete Carampangue

49 (SIMBI7 8 9 10

RR => Ra

200 pato

Recio «loa e A

zolo iusodea E A

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CICIAGIQMER <=

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TASA Chivilingo Laraquete Carampangue

* indica primera citación para Chile 1012 A” alí 6.7 8 9 10

viridis (Nitzsch.) Ehrenberg R= - - - == — -.-

Pleurosigma intermedium W. Smith

salinarum* Grunow

Rhabdonema arcuatum (Lynobye) Kitzing

Rhizosolenia hebetata í. semispina

(Hensen) Gran

Rhoicosphenia curvata (Kitz.) Grunow

ex Rabenhorst == --

Rhopalodía gibba (Ehrenberg) O. Miiller

var. gibba == -=R -

gibba var. ventricosa

(Kútz.) Perag. « Perag. =-R

musculus (Kitzing) O. Miller = -

Skeletonema costatum (Grev.) Cleve R

Stauroneis araucana Rivera R -

Stephanopyxis palmeriana (Grev.) Grunow -

Surirella guatimalensis Ehrenberg === -

ovata var. smithii Cleve-Euler =o oi Ri=.-

splendida (Ehr.) Kitzing == -.-

striatula Turpin == o-

Synedra fasciculata (Ag.) Kiútzing R= R=--

E ¿GO

Errata

..)

a 2 A ue DE A E AN

l 00)

Ms o Es o) 0)

y DG mu

rumpens var. familiaris

(Kutzing) Hustedt = - - R -

ulna (Nitzsch.) Ehrenberg - 5 RAR RO OR

Thalassiosira mendiolana Hasle $ Heimdal - -= - -RRR -

Los taxa determinados se reúnen en 50 géneros, de los cuales Navicula

fue el más representado (22 taxa, muchos de ellos con abundancia relativa

de "común”). Le siguen los géneros Nitzschia (9), Chaetoceros (8), Pinnu-

laria (7), Cymbella (6) y Achnanthes (6).

Las formas propias de aguas dulces (64) o que habitan indeferente-

mente las dulces y/o salobres (16) y que dan un total de 80 taxa, fueron

más numerosas que aquellas propias de aguas marinas (51) o salobres

(8). Hay que hacer notar aquí, y tal como se observa en la lista general

de taxa y en el análisis individual de los tres lugares muestreados, que

este mayor número de taxa dulceacuícola se ve notablemente incrementa-

do por aquellos procedentes del Río Carampangue. En ese lugar las mues-

tras fueron recolectadas, no en la desembocadura misma, sino a unos cuan-

tos kilómetros de ella, e incluso una corresponde a una pequeña poza cer-

cana al río. Con esto no es de extrañar que las diatomeas allí presentes sean

predominantemente formas de agua dulce. Por el contrario, el análisis de

las muestras de los ríos Chivilingo y Laraquete presenta una: gran simili-

tud, predominando las formas marinas y las salobres. Prácticamente son los

mismos taxa, y aquellos que se presentan sólo en un lugar tienen una

abundancia relativa tan baja (“rara”) que no sirven para tipificarlo.

Naturalmente algunos taxa fueron encontrados tanto en el Río Chivi-

lingo como en Laraquete y en Cazampangue: Achnantes affinis, A. lan-

ceolata var. dubia, A. pinnata, Asterionella formosa, Bacillaría paxilli-

fer, Cocconeis placentula var. euglypta, Eunotia tenella, Frustulia vul-

garís, Navicula rhynchocephala y Rhopalodiía gibba var. ventricosa. Se

presentaron siempre con una abundancia relativa de' 'rara”, a excepción

del Cocconeis placentula var. euglypta que fue “abundante” en el Río

Carampangue y de la Frustulia vulgaris que fue “común” en el Río Chi-

vilingo. Sin embargo la gran mayoría de ellos, y en especial los dos últi-

mos, son taxa de amplia distribución en las aguas chilenas y por lo tanto

no caracterizan a lugares específicos. ) :

Río Chivilingo

Fue el río que presentó el menor número de diatomeas en sus aguas

(55 taxa), aguas que en el período de muestreo presentaron temperaturas en-

tre 15%-17.22C y un pH de 6.46. Aquí las formas de agua dulce-salobres

(28 taxa) predominaron sobre las típicas marinas (21) o típicas salobres (6).

Los taxa que presentaron la mayor abundancia relativa fueron:

Coscrnodiscus Gamiserl oioco.. PRPONBIOS, PIES abundante

PL A A O común

ER A E A A a

E A A de

Navicula stankovici var. chilensis .................. 2

NTE PUNGEME A o. IET ¿TONO z

INTESTINO BEOMUIDL SERRA. ci o IL MA ñ

ODEBROFD MEF Toco AIPANDIIA. EMO Ñ

Las especies que más abajo se indican fueron encontradas solamente

en este río, y de ellas fue Amphipleura rutilans la que presentó la mayor

abundancia:

Ampliar a oa cl ci al común

Cuambella naviculiformis «31. amlameizo. y. (UL ay rara

Giresioma ballicumo. (53). sociub. 201 00 sb. dora. Ea E

Panmiarda midis a. ayb. er Y BL eddoloo. 04. 200 Ñ

Amphipleura rutilans es un taxon hasta el momento muy poco seña-

lado para Chile (zona sur del país), pero con seguridad su distribución es

mucho más amplia y así lo están demostrando los trabajos que han estu-

diado las microalgas que se desarrollan sobre diferentes sustratos (Krasske,

1939; Rivera, 1975).

Río Laraquete

Un gran número de taxa fueron aquí determinados (106), aproximada-

mente el doble de los encontrados en los otros lugares estudiados. Las for-

mas de agua dulce y las marinas se encuentran más o menos en la misma

proporción:

dulce-salobre : 42 taxa

salobre > 15 taxa

marinas : 49 taxa

Durante el período de muestreo, marzo-diciembre de 1977, la tempera-

tura del agua varió entre 13”-20.8C; la salinidad entre 6.5% y 11.8% y el

pH entre 6.5-7.25.

Entre los taxa que presentaron la mayor abundancia relativa, y que

a continuación se indican, predominaron los de habitat marino:

COSCINOMISCUS JANISCHIE Iii rc abundonmte; común

O E IRE INEA TA abundante; común

A CRROEYCINSs CUrodiu REO FIA IVC 90. DE común

COIN CEYOS CrDBeIaO 1 2 IRA, PRO A 9.2 e

Cietoctros Torenzianas ci TO. Pb: TAIL. PO ano, y; %

CUIDEN DESTA. 00.00. ¿PIDIO IT. PURA Y >»

Nena emutrreulata.. co LAO CAIRO. AVI p

Navicula cryptocephala var. veneta ................. ds

Navicula pseudoreinhardti ....ciiiiii dic iD >

NVunicala PpygMúea 00.007. IBA 190 OBIPIPGMA Pol A dl

Navicula stankovicii var. chilensis .................. ú

Nitseción puiens 0040. 32401, PA. QOIÍAPIOIA, uE 2

INTEESCIAE DICRIORCTOAA O O A ”

A MS A a

Otros 29 taxa fueron encontrados solamente en este lugar, y a excep-

ción de Navicula cryptocephala var. veneta que fue "común”, sólo esca-

sos frústulos fueron observados para el resto, predominando nuevamente

los propios de aguas marinas y/o salobres. Ellos son:

Amphora exigua: <.. CUIDADA. OT, ANECA . rara

Caloneís westbil»- 02:00:22: .:2::¿HODPORA O Ñ

Campylodiscus fastuoSus ...:.:22:220:042- Due [a 5d

Chaetoceros radicans- ::3:::::3.:2 2:20. MY DOS. id

Chaetoceres «socialés ::.:::c:csoc0ssociisactacs DU 3

Cocconets californica var. lengana ..................- dd

Cocconeisoeostata var costat VIDIS. PROD ds

Cocconeis costata var. hexagona .................... dl

Coscinodiscus perforatus var. cellulosa .............. e

Coscinodizcnr ste las. . >. SIDOR III 2

Cymbella hauckii var. chilensis f stigmata .......... Ñ

Dye arraR DIAAA OÍDO. 00 AL Si

CGrammatophora angulosa Dc cionnnce y

Hyalodiscus:. kerguelensis. 3.0. ITA >

Laemophora: abbreviata ISDIDOWE. IPYPUETIVAIVA DD: e

Liemophora juergensúl ..iciocicciciccccc Didi ES

Melosira solido: 2 e sl AETIIZIIIIN 7

Meridion circulare var. constricta .................. ze

Navicula cryptocephala var. Veneta ................ común

DNaEmMicuiE, GODLIASMER. ¿orion non nn a o DO rara

Nanicula..spectabules "Banenao Sonoro rayo + IO os aya e y

Pinnularia brevicosta var. intermedia f. cuneata ....... ds

Pinnularia intermedia var. hybrida .....icte..o... %

Pleurosigma mtermedtUd state > Bla demedin: 4

Rhebdoneña. arcuatuninioziois. tela 1 bolsa. (Ñ

Rhizosolenia hebetata: Í.:SEMISPINO 0... mii de

STEPRANOPYDIS: POIMETTENA Misusibasanóos o penas Maa 7 ella a eli ' %

Surtrella striatula ..... rt ol OO e 1 web él

Thalassiosira, mendiolamasol. coria. cí bridas f?

Río Carampangue

Sesenta taxa de diatomeas fueron determinados en esta área, tanto

en el río mismo como en la poza cercana a él. Debido a que existe una

mayor distancia entre los lugares de recolección y el mar, no fue raro que

las especies de agua dulce predominaran en las muestras, y la ausencia

total de taxa marinos indica que la influencia de las mareas no se hace

sentir allí. Del total de taxa encontrados 58 corresponden a formas propias

de las aguas dulces o dulce-salobres, y sólo dos son formas típicas de

aguas salobres. La emperatura del agua varió entre 15%-22*C, y la salini-

dad no sobrepasó los 0.091%.

Los taxa que presentaron la mayor abundancia relativa en las mues-

tras fueron:

Cocconeis placentula var. euglypta ............ abundante; rara

GOraltoneisuatcuSo. so. abrirlos sobustaciaa orcel ao común

Hnagriari LaAUChenaer anita amar nr ero DÍAN %

Gomphonema herculeanum var. robustuM ........o.o.o.. É

Gomphonema herculeanum var. SeptiCeps .........o.. $

INCGOLEU TAC rULOCOORAOA a E ls a ar apela E

Navicula rhynchocephala var. amphiceros ........... dd

Namecula viridula yar. MNEATIS oococsoororora > AO a

Nitzschia, dissipatla ........... su aunocdask anal

surtrella splendidA. ao.oooocisoos A E

DURELTA MM alocada e a pits e ye > INFRA O €

De los taxa encontrados exclusivamente en el área del Río Caram-

pangue sólo Navicula rhynchocephala var. amphiceros (variedad propia

de aguas dulces) y Navicula cryptocephala (de aguas dulces o algo sa-

lobres) tuvieron una abundancia relativa de “común”, siendo los restantes

24 taxa escasísimos en las muestras analizadas. La lista completa es la

Achnanthes exigua. eco rossoonopr DIRREAOAA- 60 rara

Amphipleura lindheimeri var. NEOLrOpiCA ...oo.omoo..o. 4d

ATMPROTO, SPleNdUIÍA. .ovaroarcasors a A >

Eoretotella, Menea osas vay a aaa pda: 3

CAMmbella, SINUATO a masa AA - O A. Ñ

(AMD LLO TUDO. io a mios cio 8 10. OS. DIA AA. > A

Diplanels. OVAS... <<... II e A o A Ñ

CUA DATO AORECOOÍAAO 2 do rs mn

GTromphonema hebridense ¿xi Aris. bbbitrion at 3

Gomphonema:parvuluMina Aroma e coli aaa e sl

Melosira granulata var. ANYUSTISSTMA ....o.o.o.oomoo.o..o. 4

Malos vana o le cortada. BA ali ao atico dd

Nauicula .eruntocepholasí «(ib otrioilibid arar ora común

Navicula rhynchocephala var. amphiceros ............ dl

Navicula cuspidata var. CUSPUTALA ..c.cincrcci 0 rara

Navicula cuspidata var. heribaudil ............mo.o... $e

Navicula pupula var. rectangularis .......o.oimm.o..... e

Navicula: viridula var: viridulai ciu... ed

Nameula neradala: var. rostellb ici des ci ds

Neidium-bisulcatum var. baicalense .........o.oo.o.o o...

NMaitaarcióha nacion la ria + 1 dr ADAMS A A. É

A A AAA P

Dinastia DORGUÍIS: 0%: sona RN 2

Pinnularia latevittata f. medioconstricta ............ 3

A RA A 2

urea au timalensis. tec seteeads. ami ana. e a

Descripciones y/o comentarios sobre los taxa encontrados

En las páginas siguientes se analizan todos los taxa encontrados en

el área estudiada. Los géneros y las especies que los representan han sido

ordenados por comodidad en orden alfabético.

Para cada taxón se acompaña el nombre del autor y datos precisos

de la publicación donde fue descrito. Se indica también la variación de

las medidas encontradas, sus características ecológicas y su distribución

en Chile. En los casos que no haya sido anteriormente señalado para el

país, Oo sea poco conocido, se da también una descripción.

Achnanthes affinis Grunow

Figs. 5-6, 43-44

Grunow, A. in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet.-Akad. Handl., N.F., 17(2): 20, (1880).

Valvas linear-lanceoladas con extremos redondeados, subrostrados, 11-

24 um de largo y 3-5 um de ancho.

Valva con rafe: rafe filiforme, derecha, extremos proximales derechos y

distantes entre sí, extremos distales indistintos; área axial angosta, a veces

de aspecto linear en el microscopio fotónico pero en el microscopio elec-

trónico de transmisión se aprecia que se ensancha paulatinamente hacia el

centro de la valva (fig. 44); fascia alcanza los márgenes de la valva; estrías

levemente radiales en toda la valva, en el medio 26-28 en 10 um pero más

numerosas en los extremos.

Valva con pseudorafe; pseudorafe linear, angosto, sólo en el centro de la

valva apenas ensanchado; estrías de igual orientación y número que la

valva con rafe, a veces existe una estría más corta en la parte media

figs. 5, 43).

Fue encontrado en los Ríos Chivilingo, Laraquete y Carampangue,

siempre en escasa cantidad.

Taxón propio de aguas dulces o levemente salobres, hasta el momento so-

lamente señalado para el sur del país.

Distribución conocida para Chile: 5-8 kilómetros al norte de Calbuco en la

zona de rulo; Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; Río de Ven-

tisquero Eisach; cerca de Puyuhuapi, (KRASSKE, 1939). Río Alerce (KRAS-

SKE, 1949).

Achnanthes exigua Grunow

Figs. 7-8

Grunow, A. in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet-Akad. Handl., N.F., 17(2): 21 (1880).

Valvas linear-elípticas, cuadrangulares en su cuerpo medio, 12-14 um

de largo y 5-6 um de ancho, con extremos claramente producidos, rostrado-

redondeados.

Valva con rafe: rafe filiforme, derecha, extremos proximales más anchos

extremos distales levemente curvados en distinta dirección; área axial an-

gosta, linear, levemente ensanchada en el medio de la valva; fascia alcan-

zando los márgenes de la valva y donde es algo más ensanchada; estrías

radiales, en los extremos casi paralelas, 24-25 en 10 um.

Valva con pseudorafe: pseudorafe angosta, linear; fascia ausente o bien

existen estrías más cortas y de largo desigual en los márgenes; estrías ra-

diales, en los extremos casi paralelas, 22-23 en 10 um (20-22 según la

literatura).

Fue encontrada exclusivamente en la muestra N?* 10, una poza cercana

al puente en el Río Carampangue, y en escasa cantidad. Taxón de aguas

dulces, más común en lagos que en ríos y arroyos.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Atacama (FREN-

GUELLI, 1934). Trípoli en Isla Cailín frente a Quellón, Chiloé (FRENGUELLI,

1935). Isla Dawson; 4-5 kilómetros al S.W. de Bahía Inútil; San Isidro, Cabo

Troward; Mallin Chileno (KRASSKE, 1949). Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927).

Achnanthes hauckiana Grunow var. rostrata Schulz

Figs. 45-46

Schulz, P., Ark. Bot., 13(3-4); 191, fig. 40 (1926).

Eje apical 16.5-22 um; transapical 7.5-9.0 um; estrías en la valva con

rafe 14 en 10 um; en la valva con pseudorafe 14-15 en 10 um. Fue encon-

trada en los ríos Chivilingo y Laraquete, siempre en escasa cantidad.

Variedad de aguas dulces y mixohalinas.

Distribución conocida para Chile: Lagunas de Carvajal en Atacama;

Lago Salado en Atacama (PATRICK, 1961). Estero Lenga (RIVERA in RI-

VERA et al., 1973). Bahía de Dichato; Río Quenuir; Río Pudeto (RIVERA,

1974a).

Achnanthes lanceolata var. dubia Grunow

Figs. 47-50

Grunow A., in Cleve 4 Grunow, Vet.-Akad. Handl., N.F., 17(2): 23 (1880).

Sinonimia: Achnanthes lanceolata var. rostrata (Ostr.) Hustedt, F., Abh.

Naturw. Ver. Bremen, 20(2): 279, Lám. 3, fig. 34 a-b (1911).

Eje apical 12-17 um; transapical 4.5-7.0 um; estrías 14-17 en 10 um.

Presente en los tres lugares muestreados, Ríos Laraquete, Chivilingo y Ca-

rampangue, “rara”.

Variedad de aguas dulces con amplio rango de tolerancia a variadas

condiciones ecológicas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA, 1974 b.

Citas adicionales Trípoli de San Pedro de Atacama (FRENGUELLI, 1934).

Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA £€ ARCOS, 1975). Lago Puyehue,

Río Pascua, Calbuco, Cerca de Puyuhuaqui (KRASSKE, 1939).

Achnanthes pinnata Hustedt

PraL

Hustedt, F., in Hedin, Southern Tibet, 6(3): 123, Lám. 9, fig. 15-18 (1922).

Eje apical 15-16 um; transapical 6-6.5 um; estrías 11 en 10 um. Fue en-

contrada, con abundancia relativa de 'rara”, en los Ríos Chivilingo, Lara-

quete y Carampangue.

Especie de aguas dulces, en arroyos y ríos.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Achnanthes temperei M. Peragallo

Pida 02

Peragallo, M., in Tempere ¿ Peragallo, Diat Monde Entier, p. 100 (1908).

Eje apical 55-77 um; transapical 11-23 um; estrías en la valva con rafe

10 en 10 um; estrías en la valva con pseudorafe 8 en 10 um. Fue encontra-

da en los Ríos Chivilingo y Laraquete.

Especie de aguas dulces, especialmente abundante en los ríos costeros.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Actinocyclus curvatulus Janisch

Figs. 54-59

Janisch, C. in A.S.A., Lám. 57, fig. 31 (1878).

Sinonimia: Actinocyclus subocellatus Rattray, J., Proc. Roy. Soc. Edinb.,

16: 488 (1889).

Coscinodiscus divisus Grunow, A., Naturw. Beitr. zur Kennt.

Kaukasuslander, p. 125 (1878). Denkschr. Akad. Wiss. Wien,

Math. Nat. Kl., 48: 83, Lám. D. fig. 16 (1884).

Diámetro valvar 38-71 um; 8-10 alveolos en 10 um. Fue encontrada en

los ríos Chivilingo y Laraquete donde ya había sido señalada por Rivera

(1978).

Marina, común en las aguas frías de ambos hemisferios.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1978.

Actinocyclus subtilis (Gregory) Ralfs

Fig. 36

Ralís, J. in Pritchard, A., Infus., p. 835 (1861).

Valvas circulares, casi planas, 52-58 um de diámetro en el material

estudiado pero señalado en la literatura como de 40-160 um. Superficie

valvar ornamentada con areolas dispuestas en líneas radiales formando

especie de fascículos, pero los espacios interfasciculares no son visibles;

aréolas 14-15 en 10 um (12-15 según la literatura), levemente más grandes

hacia el centro de la valva. Area central circular o subcircular, un tanto

irregular, cubierta con aréolas dispuestas desordenadamente; área hialina

de ancho variable. Pseudonódulo notorio, submarginal, circular o subcir-

cular, rodeado de un espacio hialino. Margen valvar con apículas nume-

rosas, submarginales.

Esta especie es fácilmente reconocible por la forma circular de sus

valvas y por el número de aréolas.

Taxon marino de amplia distribución en las aguas templadas y tropi-

cales. Presente en el Río Laraquete, “rara”.

Distribución conocida para Chile: Golfo de Dalcahue; 21%22'S, 70%30"W

(KRASSKE, 1941).

Actinoptychus senarius (Ehrenberg) Ehrenberg

ELA

Ehrenberg, C.G., Lám. 1, parte 1, fig. 27 (1843).

Diámetro valvar 2946 um. Encontrada en los ríos Chivilingo y Lara-

quete, siempre en escasa cantidad.

Especie marina, bentónica, a menudo encontrada como epífita de al.

gas superiores; cosmopolita de aguas templadas y cálidas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA en RIVERA et al., 1973 y

RIVERA 1974 a (como A. undulatus (Bailey) Ralís).

Citas adicionales: Río Cullen (CLEVE, 1900).

Amphipleura lindheimeri Grunow var. neotropica Frenguelli

Figs. 15, 59

Frenguelli, J.,, Anal. Mus. Nac. Hist. Nat., 37: 418, Lám. 4, fig. 12 (1933).

Eje apical 168 um; transapical 26 um; estrías transapicales 25-26 en

10 um; estrías long. 20-21 en 10 um. Encontrada exclusivamente en el Río

Carampangue, “rara”.

Variedad de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Amphipleura rutilans (Trentepohl) Cleve

Fiore 2

Cleve, P.T., Sv. Vet.-Akad. Handl., N.F., 26(2): 126 (1894).

Eje apical 17.0-22.5 um; transapical 4.5-5.0 um; estrías 26-27 en 10 um.

Solamente encontrada en la muestra N? 1] del Río Chivilingo y con

abundancia relativa de común”.

Taxon de aguas salobres y marinas, de amplia distribución en las cos-

tas europeas; se desarrolla sobre cualquier tipo de sustrato, ya sea vivo

o muerto, pero siempre en aguas poco profundas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1975.

Amphora exigua Gregory

Gregory, W., Trans. Roy. Soc. Edinb., 21: 514, Lám. 12, fig. 75 (1857a).

Eje apical 38 um, transapical 6 um; estrías 18-19 en 10 um.

Un solo frústulo observado en la muestra N? 3 del Río Laraquete, “rara”.

Taxon de aguas marinas y mixohalinas.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción; Estero Lenga; Río

Tubul; Río Pudeto (RIVERA, 1974a).

Amphora ovalis var. libyca (Ehrenberg) Cleve

Cleve, P.T., Sv. Vet.-Akad. Handl., 27(3):104 (1895)

Sinonimia: Amphora libyca Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin,

p. 205, (1840).

Eje apical 36-42 um; transapical 7-8 um, estrías 13-14 en 10 um. Varie-

dad de aguas dulces, estancadas o levemente corrientes, cosmopolita, nun-

ca presente en grandes cantidades, “rara” en los Ríos Chivilingo y Lara-

quete.

Distribución conocida para Chile: Trípoli a 2 kilómetros de Chorrillos (FREN-

GUELLI, 1929). Trípoli de Calama (FRENGUELLI, 1930). Loa-Atacama (HUS-

TEDT, 1927). Trípoli de San Pedro de Atacama (FRENGUELLI, 1934). Puer-

to Montt (SCHMIDT in A.S.A., 1875). Lago Llanquihue; Calbuco; Bosque de

lluvias del sur de Chile (KRASSKE, 1939). Puyuhuapi (KRASSKE, 1941). Trí-

poli en Isla Cailín frente a Quellón en Chiloé (FRENGUELLI, 1935). Lago

Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; cerca de Puyuhuapi (KRASSKE,

1939). Patagonia: Posa Chico; Arroyo junto a Laguna Blanca; Sobre piedras

en Río Tres Pasos (MUELLER, 1909). Lago General Carrera; Mallín Chileno;

A 67 y 100 kilómetros de Punta Arenas; Isla Dawson; San Isidro, Cabo

Troward (KRASSKE, 1949).

Amphora splendida Rivera

Rivera, P., Gayana Bot., 28: 61, fig. 94 (1974).

Largo: 27-28 um; ancho 5-6 um, estrías ventrales 24 en 10 um, estrías

dorsales 20-21 en 10 um.

Esta delicada especie, descrita por Rivera (loc. cit.) para el Río An-

dalién y Río Bío-Bío, fue ahora encontrada en una poza cercana al puente

en el Río Carampangue (muestra N* 10), y con la abundancia de “rara”.

Taxon de ecología aún no bien conocida.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Asterionella formosa Hassall

Figr 16

Hassall, A.H., Microscop. Exam. Water London, p. 10, Lám. 2, fig. 5, (1850).

Sinonimia: Asterionella gracillima Heiberg, P.A., Conspect. Crit. Diat.

Danicarum, p. 68, Lám. 6, fig. 19 (1863).

Asterionella formosa var. gracillima (Hantzsch) Grunow, A.

in Van Heurck, Syn. Diat. Belgique, p. 155, Lám. 51, fig. 22 (1881).

Eje apical 35-48 um; transapical 2.5-3.0 um; estrías 25-26 en 10 um.

Presente en los Ríos Chivilingo, Laraquete y Carampangue, siempre

rana”

Variedad de aguas dulces, principalmente en las más frías.

Distribución conocida para Chile: Laguna La Posada (RIVERA, 1974b). Con-

cepción y alrededores (PARRA, RIVERA et al., 1974). Desembocadura del

Río Bío-Bío (RIVERA Y ARCOS, 1975). Río Quenuir (RIVERA, 1974a). La-

gunas ll y Il próximas a la Cordillera de Paine (ASPREY et al., 1964). Trí-

poli en Puyehue, Osorno (FRENGUELLI, 1935). Lago Fagnano (THOMASSON,

1955). Tierra del Fuego (KORNER, 1970), A 67 kilómetros de Punta Arenas;

San Isidro, Cabo Toward (KRASSKE, 1949).

Fig. 2.— Amphipleura rutilans (Trent.) Cleve. Estereopar obtenido con el

microscopio electrónico de transmisión.

Bacillaria paxillifer (O. Miller) Hendey

Figs. 57-58

Hendey, N.I., Jour. Roy. Microsc. Soc., 71: 74 (1951).

Sinonimia: Bacillaría paradoxa Gmelin, J. in Linnaeus, C., Syst. Nat.,

1(6): 3903 (1788).

Nitzschia paradoxa (Gmelin) Grunow, A. in Van Heurck, H.,

Syn. Diat. Belgique, p. 176, Lám. 61, fig. 6 (1880-85).

Eje apical 100-101 um; transapical 6.0 um; estrías 1921 en 10 um; poros

8 en 10 um. “Rara” en los Ríos Chivilingo, Laraquete y Carampangue.

Especie de aguas salobres y de amplia distribución mundial. Según

Simonsen (1962) es mesohalobia y eurihalina.

Distribución conocida para Chile: Frente a Antofagasta (MEYER, 1970). Ba-

hía de Coquimbo; Isla Santa María; Golfo de Ouetalmahue (RIVERA, 1974a).

Bahía de Dichato (KRASSKE, 1941; RIVERA, 1974a). Bahía de Concepción

(RIVERA, 1969). Bahía de San Vicente; Golfo de Dalcahue; Puyuhuapi;

Golfo de Ancud (KRASSKE, 1941). Calbuco (KRASSKE, 1939 y 1941); Puerto

Edén (GUZMAN 8 CAMPODONICO, 1972). Bahía de Orange, Cabo de Hor-

nos (PETIT, 1889).

Bacteriastrum sp.

A rril A

Solamente valvas interiores aisladas fueron encontradas en muestras

del Río Laraquete, cadenas completas o al menos las células terminales de

las cadenas no fueron visualizadas. Con ello la identificación específica no

se pudo realizar y nos limitamos aquí a dar las características observadas.

Valvas circulares, 12-13 um de diámetro, provistas de 7-8 setas las cua-

les, luego de una parte basal, se bifurcan dicotómicamente en el plano

valvar. Esta parte basal es aproximadamente igual al diámetro de la valva,

11-13 um de largo.

No se asemeja, al menos en parte, al Bacteriastrum sp. que Rivera

(1969) señala para la Bahía de Concepción debido al largo de la parte

basal de las setas y por ello podría corresponder con el B. elongatum

Cleve, ya señalado por Balech (1962) para la costa chilena. Sólo futuros

análisis del fitoplancton de nuestra costa dilucidarán el problema.

Bidduphia aurita var. obtusa (Kútzing) Hustedt

Hustedt, F., Rabenhorst Krypt. Flora, 7(1): 848, fig. 502 (1930).

Eje apical 36-48 um. Encontrado en los Ríos Chivilingo y Laraquete,

Tara”:

Taxon marino, nerítico, cosmopolita eu:ioico.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA et al., 1973 y RIVERA 1974 a.

Citas adicionales: Bahía de San Antonio (MONTECINO 6 LOPEHANDIA,

1972). Caleta Leandro, Tumbes (RIVERA, 1975). Canal el Morro, Talcahuano

(PARRA et al., 1978).

Biddulphia longicruris var. hyalina (Schroder) Cupp

Cupp, E.E., Bull. Scripps Inst. Oceanogr., 5(1): 157, fig. 111 B, 1-3 (1943).

Sinonimia: Biddulphia hyalina Schroder, B., Vierteljahrsschr. Naturf. Ges.

Zúrich, 91: 998, Ag, 21 (1906).

Eje apical 58-80um . Tal como la especie anterior, fue encontrada sólo

en los Ríos Chivilingo y Laraquete con abundancia de “rara”.

Marina, nerítica, de amplia distribución en las aguas templadas.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo; Bahía de Taltal;

20239'S: 70%20"W:; 21922'S; 7030"W; Bahía de Iquique; Bahía de Jamin; Ba-

hía de San Vicente; Golfo de Arauco; Bahía de Dichato; Calbuco; Corral

(KRASSKE, 1941). Bahía de Valparaíso (KRASSKE, 1941; AVARIA, 1965 y

1971). Bahía de San Antonio (MONTECINO 4 LOPEHANDIA, 1972). Bahía

de Concepción (KRASSKE, 1941; RIVERA, 1969 y 1974a).

Caloneis westii (Smith) Hendey

Fig. 60

Hendey, N.I., Fish. Invest., 5: 230, Lám. 44, fig. 5-10; Lám. 45, fig. 1-13 (1964).

Sinonimia: Navicula formosa Gregory, W., Trans. Micr. Soc. London, N.S.,

4: 42, Lám. 5, fig. 6 (1856).

Caloneis oregonica (Ehrenberg) Patrick, R., in Patrick 6 Reimer,

Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13: 581, Lám. 53, fig. 6 (1966).

Eje apical 125 um; transapical 29 um; estrías 12 en 10 um. Muy raro en

el material examinado, una sola valva observada en la muestra N* 3 del

Río Laraquete.

Taxon de aguas marinas y mixohalinas.

Distribución conocida para Chile: Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a).

Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Campylodiscus fastuosus Ehrenberg

Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 361 (1845).

Sinonimia: Campylodiscus thuretú Brébisson, A. de, Mém. Soc. Nat. Sci.

Cherbourg, 2: 241, fig. 3 (1854).

Fue encontrada sólo en una muestra del Río Laraquete, “rara”.

Especie marina, ya señalada para la zona norte y sur del país.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Tiltil (FRENGUELLI, 1949). Ba-

hía de Coquimbo; Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a). Bahía de Di-

chato; Bahía de San Vicente; Calbuco; Puyuhuapi (KRASSKE, 1941). Bahía

Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Ceratoneis arcus (Ehrenberg) Kiitzino var. arcus

Fig. 61

Kiitzing, F.T., Bacill., p. 104, Lám. 6, fig. 10 (1844).

Eje apical 55-81.5 um; transapical 5.0-6.5 um; estrías 17 en 10 um. Pre-

sente en los Ríos Laraquete y Carampangue siendo “común” en este último

lugar. Las valvas muestran una amplia variación y las características de

la variedad linearis se presentan en muchos frústulos.

Cosmopolita en las aguas dulces, común en las frías y torrentosas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Piuchué, Isla Grande de Chiloé (ESPINOSA, 1917). De-

sembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA € ARCOS, 1975).

Ceratoneis arcus var. amphioxys (Rabenhorst) Brun

Figs. 62-63

Brun, J., Diat. d. Alpes, p. 52, Lám. 2, fig. 28 (1880).

Eje apical 24.5-33.4 um; transapical 7.0-7.5 um; estrías 16-18 en 10 um.

Tal como la variedad tipo se le encontró en los Ríos Laraquete y Caram-

pangue, pero su abundancia fue “rara”.

Variedad de aguas dulces que acompaña generalmente a la variedad

tipo.

Distribución conocida para Chile: Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al,

1973). Isla Santa María (RIVERA, 1974a). Lago Risopatrón; Afluente del La-

go Risopatrón; Río Pascua; Río Tronador; Río Ventisquero Eisach; Ventis-

quero Yacaf; Calbuco; Cerca de Puyuhuapi (KRASSKE, 1939).

Chaetoceros constrictus Gran

Gran, H.H., Norske Nordh. Exped., Bot. Protoph., p. 17, Lám. 1, fig. 11-13;

Lám. 3, fig. 42 (1897)

Diámetro valvar 21.6-23 um. Presente exclusivamente en la desemboca-

dura del Río Laraquete, “rara”.

Marina, nerítica, cosmopolita eurioica.

Distribución conocida para Chile: 20%39'S,7020"W; Bahía de Ef; Cal-

buco (KRASSKE, 1941). Bahía de Valparaíso (AVARIA, 1965 y 1971). Bahía

de San Antonio (MONTECINO 4 LOPEHANDIA, 1972). Bahía de Concepción

(KRASSKE; 1941; RIVERA, 1969). Canal El Morro, Talcahuano (PARRA et

al., 1978). Entrada Canal Caucahue; Bahía Gualaihué; Isla Pelada; Isla

Chauque; Canal Dalcahue; Isla Quinchao; Isla Chelín; Canal Jacaf; Ayacara

(AVARIA, 1970). Puerto Edén (GUZMAN 4 CAMPODONICO, 1972).

Chaetoceros debilis Cleve

Cleve, P.T., Sv. Vet.-Akad. Handl., 20(3): 13, Lám. 1, fig. 2 (1894).

Diámetro valvar 18-19 um. Presente sólo en el Río Laraquete, “rara”.

Marina, nerítica, abundante en aguas templadas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA en RIVERA et al., 19783.

Citas adicionales: Bahía de San Antonio (MONTECINO 4 LOPEHANDIA,

1972). Puerto Edén (GUZMAN 6 CAMPODONICO, 1972). Magallanes (LEM-

BEYE et al., 1975), Ensenada Wilson (CAMPODONICO et al., 1975).

Chaetoceros diadema (Ehrenberg) Gran

Gran, H.H., Norske Nordh. Exped., Bot. Protoph., p. 20, Lám. 2, fig. 16-18 (1897).

Sinonimia: Syndendrium diadema Ehrenberg, C.G., Mikrogeol., Lám. 35 A,

ig. 18,18: 1894).

Diámetro valvar 19.2 um. Muy “rara” en el Río Laraquete, se encontró

una sola cadena.

Marina, nerítica, cosmopolita eurioica, de preferencia en las aguas frías.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Mejillones (Ehrenberg, 1856;

MOELLER, 1891; FRENGUELLI, 1949). Trípoli de Tiltil (FRENGUELLI, 1949).

20395; 70220"W; Bahía de Iquique; Bahía de Janin; Bahía de San Vicente;

Golfo de Arauco; Calbuco; Golfo de Dalcahue (KRASSKE, 1941). Bahía de

Valparaíso (AVARIA, 1965 y 1971). Bahía de Concepción (KRASSKE, 1941;

RIVERA, 1969). Bahía de Gualaihué; Estero Putemún (AVARIA, 1970). Ma-

gallanes (LEMBEYE et al., 1975). Ensenada Wilson, Magallanes (CAMPO-

DONICO et al., 1975). Puerto Edén (GUZMAN 6 CAMPODONICO, 1972).

Chaetoceros didymus Ehrenberg

Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 75, 1845 (1846).

Eje apical 12-14 um. Presente solamente en el Río Laraquete, “rara”.

Marina, nerítica, cosmopolita de aguas templadas y cálidas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA en RIVERA et al., 1973.

Citas adicionales: Trípoli de Tiltil (FRENGUELLI, 1949). Bahía de San An-

tonio (MONTECINO 6 LOPEHANDIA, 1972). Puerto Edén (GUZMAN y CAM-

PODONICO, 1972). Magallanes (LEMBEYE et al., 1975), Ensenada Wilson

(CAMPODONICO et al., 1975).

Chaetoceros eibenii Grunow

Grunow, A. in Van Heurck, Syn. Diat. Belgique, Lám. 82, fig. 910 (1881).

Eje apical 21.0-27.0 um. Fue encontrada en los Ríos Chivilingo y Lara-

quete, en varias muestras con una abundancia de “común”.

Marina, nerítica, cosmopolita eurioica.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción (RIVERA, 1969).

Chaetoceros lorenzianus Grunow

Grunow, A., Verh. Zool.-Bot. Ges. Wien, 13: 157, Lám. 5, fig. 13 (1863).

Diámetro valvar 24-26 um. Junto con el Chaetoceros eibeniíi fue la es-

pecie más abundante en las muestras y se la encontró sólo en la desembo-

cadura del Río Laraquete.

Marina, nerítica, cosmopolita de aguas templadas y cálidas.

Distribución conocida para Chile: Frente a Arica; Frente a Curicó; Estrecho

de Magallanes (HENDEY, 1937). Trípoli de Mejillones (FRENGUELLI, 1949).

Frente a Mejillones (HENDEY, 1937). Trípoli de Tiltil (FRENGUELLI, 1949).

Bahía de Coquimbo; Bahía de Taltal; 219%22'S, 70%30"W; Bahía de San Vi-

cente; Golfo de Arauco; Corral; Bahía de Dichato; Calbuco; Puyuhuapi

(KRASSKE, 1941). Bahía de Valparaíso (AVARIA, 1965 y 1971). Frente a Val-

paraíso (MEYER, 1970). Bahía de San Antonio (MONTECINO 4 LOPEHAN-

DIA, 1972). Bahía de Concepción (RIVERA, 1969). Entrada Canal Caucahue;

Bahía de Gualaihué; Isla Pelada; Isla Chauque; Isla Quinchao; Isla Chelin;

Isla Clotilde; Isla Puluqui; Isla Aulén; Isla Calcura; Estero de Reloncaví

(AVARIA, 1970). Estrecho de Magallanes (HENDEY, 1937). Puerto Edén (GUZ-

MAN 6 CAMPODONICO, 1972). Paso de Drake (MEYER, 1966).

Chaetoceros radicans Schiitt

Schútt, F., Ber. Deutsch. Bot. Ges., 13: 48, fig. 27 (1895).

Sinonimia: Chaetoceros scolopendra Cleve, P.T., Sv. Vet-Akad. Handl.,

22(3): 30, fig. 4-6 (896).

Diámetro apical 10-12 um. Muy "rara” en el material estudiado, pre-

sente sólo en el Río Laraquete. .

Marina, nerítica, abundante en aguas templadas.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Janin; Bahía de Taltal; 20%39'S,

70%20'"W; 21922'S, 70230'"W; Bahía de Iquique; Bahía de San Vicente; Bahía

de Dichato; Golfo de Arauco; Corral; Puyuhuapi; Golfo de Reloncaví; Golfo

de Dalcahue (KRASSKE, 1941). Trípoli de Tiltil (FRENGUELLI, 1949). Bahía

de Coquimbo (KRASSKE, 1941; RIVERA, 1974a). Bahía de Valparaíso (ZA-

CHARIAS, 1906; KRASSKE, 1941; AVARIA, 1965 y 1971). Bahía de San An-

tonio (MONTECINO 6 LOPEHANDIA, 1972). Bahía de Concepción (KRASSKE,

1941; RIVERA, 1969). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Cal-

buco (KRASSKE, 1941; HELMCKE € KRIEGER, 1954). Bahía de Gualaihué;

Isla Clotilde; Isla Traiguén; Puerto Auchemo; Canal Rinihue; Ayacara; Isla

Puluqui (AVARIA, 1970). Puerto Edén (GUZMAN 4 CAMPODONICO, 1972).

Chaetoceros socialis . Lauder

Latider, -H.S., Trans Mier Soc N.S. 12%. 77, Lámin8, ig. 1 (1864)

”

Diámetro valvar 9-11 um. Presente en el Río Laraquete, muy “rara”.

Marina, nerítica, cosmopolita, “común” en las aguas frías.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA et al., 1973.

Citas adicionales: Bahía de San Antonio (MONTECINO 4 LOPEHANDIA,

1972). Puerto Edén (GUZMAN 6 CAMPODONICO, 1972). Magallanes (LEM-

BEYE, et al., 1975). Paso de Drake (MEYER, 1966).

Cocconeis californica var. lengana

Figs. 64-65

Rivera, P., en Rivera et al. Gayana, Bot., 23: 29, Lám. 7, fig. 2-7 (1973).

Eje apical 14.0-20.0 um; transapical 10-12.0 um; estrías en la valva con

pseudorafe 14-15 en 10 um al centro y 13 en 10 um las marginales. Presente

exclusivamente en el Río Laraquete y en la mayoría de las muestras, siem-

pre en escasa cantidad.

Variedad marina, de amplia distribución en la costa chilena.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Cocconeis costata Gregory var. costata

Figs. 66-67

Gregory, W., Quart. J. Microscop. Sci., 3: 39, Lám. 4, Fig. 10 (1855).

Eje apical 22-36 um; transapical 13.0-22.5 um; estrías en la valva con

rafe 9 en 10 um, 6-7 en la valva con pseudorafe. Presente sólo en el Río

Laraquete, “rara”.

Especie marina, litoral, polihalobia.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA en RIVERA et al., 1973 y

RIVERA 1974 a.

Citas adicionales: Bahía de Concepción (RIVERA, 1969 como Cocconets sp.).

Cocconeis costata var. hexagona Grunow

Figs. 68-69

Grunow, A. in Van Heurck, Syn. Diat. Belgique, Lám. 30, figs. 15-17 (1881).

Eje apical 24.5 um; transapical 10 um; 8 costillas en 10 um. Muy “rara”,

presente solamente en el Río Laraquete.

Variedad marina de distribución y ecología poco conocida.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción (RIVERA, 1973).

Caleta Leandro, Tumbes (RIVERA, 1975). Isla Santa María (RIVERA, 1974a).

Cocconeis placentula var. euglypta (Ehrenberg) Cleve

¡Te RI

Cleve, P.T., Sv. Vet.-Akad. Handl., N.F., 27(3): 170 (1895).

Eje apical 17-23 um; transapical 8-12 um; estrías en la valva con rafe

18-19 en 10 um; en la valva con pseudorafe 21-23 en 10 um. Fue encontrada

en los Ríos Chivilingo, Laraquete y Carampangue, pero sólo en este último

lugar fue constante en todas las muestras y, en una de ellas, fue "abun-

dante”.

Variedad de aguas dulces y salobres, epífita.

Distribución conocida para Chile: Calama, caliza lacustre (FRENGUELLI,

1938b); Bahía de Coquimbo; Bahía de Dichato; Bahía de Concepción; Isla

Santa María; Río Tubul; Río Quenuir; Río Pudeto; Golfo de Quetalmahue

(RIVERA, 1974a). Río Andalién; Río Bío-Bío; Arroyo Leonera; Laguna La

Posada; Laguna Lo Méndez (RIVERA, 1974b). Estero Lenga (RIVERA en RI-

VERA et al., 1973). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS,

1975). Trípoli en Puyehue (FRENGUELLI, 1935).

Cocconeis sp.

Pia. 70

Valva con pseudorafe: elíptica, 31 um de largo y 27 um de ancho; area

axial angosta, linear a linear-lanceolada; area central muy reducida. Es-

trías radiales, curvadas, 16 en 10 um en el área axial y 18 en 10 um en el

margen, formadas de nítidos puncta; la zona marginal aparece más torca

y compacta, a modo de un anillo.

Este hermoso Cocconeis fue encontrado exclusivamente en la muestra

N* 10, una poza cercana al Río Carampangue, y como solamente hemos

observado la valva con pseudorafe nos fue imposible llegar a su determi-

nación específica. Sus características la acercan sin embargo al C. rugosa,

una especie que Sovereign (1958, Trans. American Micr. Soc., 77(2): 112,

Lám. 3, fig. 34-35) describió para el Lago Crater, en Oregón. El número de

estrías, su orientación, la zona marginal diferenciable y la forma de la valva

coinciden plenamente con dicho taxón, pero nada puede decirse con segu-

ridad hasta encontrar un mayor número de frústulos.

Coscinodiscus janischii Schmidt

Figs. 71-72

Schmidt, A., A.S.A., Lám. 64, fig. 3-4 (1878).

Diámetro valvar 55-65 um; alveolos 4-5 en 10 um; estrías 8-10 en 10 um.

Presente en los Ríos Chivilingo y Laraquete generalmente con una abun-

dancia relativa alta, “abundante” o “común”.

Especie marina, planctónica, cosmopolita, nerítica y oceánica.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo, Bahía de Taltal;

21%22'S, 70230"W; 20%39'S, 70%220"W; Bahía de Iquique; Bahía de Janin; Bahía

de San Vicente; Bahía de Dichato; Golfo de Arauco; Calbuco; Puyuhuapi;

Golfo de Reloncaví; Golfo de Dalcahue (KRASSKE, 1941). Bahía de Valpa-

raíso (KRASSKE, 1941; AVARIA, 1965 y 1971). Bahía de Concepción (KRASS-

KE, 1941; RIVERA, 1969 y 1974a). Puerto Cadena; Isla Cinco Hermanos

(AVARIA, 1970).

Coscinodiscus marginatus Ehrenberg

Ehrenberg, C.G., Abh. Akad. Wiss. Berlin, p. 142 (1841).

Diámetro valvar 55-65 um; alveolos 4-5 en 10 um, estrías 8-10 en 10 um.

Fue encontrada, con abundancia de “rara”, en los Ríos Chivilingo y La-

raquete.

Marina, nerítica, cosmopolita eurioica.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción (RIVERA, 1969).

Coscinodiscus perforatus var. cellulosa Grunow

Figs. 74-76

Grunow, A., Denkschr. Akad. Wiss. Wien, Math. Nat. Kl., 48: 75 (1884).

Diámetro valvar 140-166 um; alveolos al centro 4.0-4.5 en 10 um, en la

mitad 3.5 en 10 um, cerca del margen 3.0, y en el margen 5-6 en 10 um.

La forma del área central en esta especie es un tanto variable: en algunos

casos se presenta una pequeña área hialina en el centro de la valva ro-

deada por una roseta central (fig. 75), otras veces existe solamente esta ro-

seta (fig. 76).

Fue encontrado exclusivamente en la desembocadura del Río Laraque-

te? “raro”.

Marina, planctónica.

Fig. 3.— Cocconeis placentula var. euglypta (Ehr.) Cleve. Estereopar ob-

tenido con el microscopio electrónico de transmisión.

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A, Va

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Tiltil (FRENGUELLI, 1949). Ba-

hía de Concepción (RIVERA, 1969). Estero Lenga (RIVERA, 1974a).

Coscinodiscus stellaris Roper

Roper, F.C.S., Quart. J. Microscop. $ci., 6: 21, Lám. 3, fig. 3 (1858).

Diámetro valvar 77 um; aréolas al centro 14-15 en 10 um; en la mitad

16 en 10 um, en el borde 18-19 en 10 um. Presente solamente en la desem-

bocadura del Río Laraquete, una sola valva observada, “rara”.

Marina, oceánica, cosmopolita de aguas templadas y frías.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Tiltil: Trípoli de Mejillones

(FRENGUELLI, 1949). Bahía de Concepción (RIVERA, 1969). Paso de Drake

(MEYER, 1966).

Cyclotella meneghiniana Kitzing

Fig. 9

Kiútzing, F.T., Bacill., p. 50, Lám. 30, fig. 68 (1844).

Sinonimia: Cyclotella meneghiniana f. nuda Cleve-Euler, A., Acta Geogr.,

Soc. Geogr. Fenn., 10(1): 7 (1948).

Diámetro valvar 10 um; costillas 8-9 en 10 um. Presente solamente en la

muestra N?* 10, una poza cercana al puente del Río Carampangue, 'rara”.

Taxon de aguas dulces y salobres, cosmopolita.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli de

San Pedro de Atacama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1934). Calama, caliza

lacustre (FRENGUELLI, 1938b). Bahía de Coquimbo; Isla Santa María (RI-

VERA, 1974a). Bahía de Concepción (RIVERA, 1969). Río Andalién; Río Bío-

Bío; Laguna Pineda; Laguna Lo Méndez (RIVERA, 1974b). Desembocadura

del Río Bío-Bío (RIVERA 6 ARCOS, 1975). Estero Lenga (RIVERA en RIVE-

RÁ et al., 1973). Laguna Chica de San Pedro (RIVERA, 1970). Calbuco; Ver-

liente cerca de Río Puelo (KRASSKE, 1939). Lago Quillehue; Lago Llanqui-

hue (THOMASSON, 1963). Trípoli en Puyehue (FRENGUELLI, 1985). Tierra

del Fuego (CLEVE-EULER, 1948). Lago General Carrera; Isla Dawson; San

Isidro, Cabo Toward; 4-5 kilómetros al SW de Bahía Inútil (KRASSKE, 1949).

Cymbella hauckii var. chilensis f. stigmata Rivera

Rivera, P., Cienc. y Tec. del Mar. Contrib. CONA, 1978 (EN PRENSA).

Difiere de la f. chilensis Rivera por la presencia de un estigma en el

lado ventral del área central. Largo 52-65 um; ancho 14.5-17. um; estrías

9-11 en 10 um las centrales y más numerosas (14-16) en los extremos; punc-

ta de cada estría 23-24 en 10 um.

Este taxon fue descrito por RIVERA (loc. cit.) a partir del mismo ma-

terial ahora estudiado, y fue encontrado solamente en la desembocadura

del Río Laraquete.

Cymbella minuta Hilse

Pig... 10

Hilse, W. in Rabenhorst, L., Alg. Sachs. resp. Mitteleuropas, Dec. 63-64,

N? 635 (1862).

Sinonimia: Cymbella ventricosa Kútzing, F.T., Bacill., p. 80, fig. 16 (1844).

Encyonema ventricosum (Kútzing) Grunow, A., in A.S.A., Lám.

10, fig. 59 (1875).

Encyonema lunula (Ehrenberg) Grunow, A., ibid., Lám. 10,

fig. 42-43 (1875).

Largo 18-22 um; ancho 6-8 um; estrías dorsales y ventrales en igual

número, 12-13 en 10 um. Fue encontrada en los Ríos Laraquete y Caram-

pangue, “rara”.

Taxon de aguas dulces, amplia distribución.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Calama (FRENGUELLI, 1930).

Trípoli de San Pedro de Atacama (FRENGUELLI, 1934). Loa-Atacama (HUS-

TEDT, 1927). Bahía de Coquimbo; Isla Santa María; Golíto de Ouetalmahue

(RIVERA, 1974a). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Río An-

dalién; Río Bío-Bío; Laguna Lo Méndez (RIVERA, 1974b). Desembocadura

del Río Bío-Bío (RIVERA 6 ARCOS, 1975). Concepción y alrededores (PARRA

et al., 1974). Calle en San Vicente; Termas de Puyehue; Lago Rupanco; La-

go Llanquihue; Calbuco; 5-8 kilómetros al norte de Calbuco; Fiordo de Re-

loncaví; Río Puelo; Río Pascua; Bosque de lluvias del sur de Chile; Lago

Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; Ventisquero Yacaf; Cerca de Pu-

yuhuapi (KRASSKE, 1939). Bahía de Coliumo; Puyuhuapi (KRASSKE, 1939

y 1941). Trípoli en Isla Cailín frente a Quellón, Chiloé (FRENGUELLI, 19835).

Posa Kark; Patagonia (MUELLER, 1909). Lago Lynch; Río Alerce; Lago Ge-

neral Carrera; Río Rubens; Lago O'Higgins; Mallín Chileno; Monte Tronador:

A 100 kilómetros de Punta Arenas: San Isidro, Cabo Troward; 4-5 kilómetros

al SW de Bahía Inútil (KRASSKE, 1949). Bahía Orange, Cabo de Hornos

(PETIT, 1889).

Cymbella naviculiformiís Auerswald

Fig. 13

Auerswald in Heiberg, P.A.C., Conspect. Crit. Diat. Danicarum, p. 108, 109,

Lám. 1, fig. 3 (1863).

Eje apical 40 um; transapical 10 um; estrías 14 en 10 um al centro y

19-20 en los extremos. Presente exclusivamente en el Río Chivilingo, “rara”.

Taxon de aguas dulces de amplia distribución mundial.

Distribución conocida para Chlie: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Concepción y alrededores (PARRA et al., 1974).

Cymbella pusilla Grunow

Figs. 11-12

Grunow, A., in A.S.A., Lám. 9, fig, 36-37 (1875).

Eje apical 18.0-26.0 um; transapical 4.5-5.0 um; estrías dorsales 18-19 en

10 um; ventrales 18-19 en 10 um Fue encontrada “rara” en el Río Chivi-

lingo.

Taxon de aguas dulces y salobres.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli

a 2 kilómetros de Chorrillos, Calama; Trípoli del Salar de Ollagie; Trípoli del

Salar de Atacama (FRENGUELLI, 1929). Calama, caliza lacustre (FREN-

GUELLI, 1938b). Isla Llancahue (KRASSKE, 1939). Río Quenuir (RIVERA,

1974a).

Cymbella sinuata Gregory

Fig. 14

Gregory, W., Quart. J. Microscop. Sci., 4: 4, Lám. 1, fig. 17 (1856).

Eje apical 16 um; transapical 4.5 um; estrías en el centro 12 en 10 um;

en los extremos 14 en 10 um. Presente solamente en el Río Carampangue,

“HAL, a

Taxon de aguas dulces, de amplia distribución.

Disrtibución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975).

Cymbella tumida (Brébison) Van heurck

Pig. 79

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belgique, Lám. 2, fig. 10 (1880).

Eje apical 57-61 um; transapical 16.5-18.0 um; estrías al centro 910 en

10 um; en los extremos 12-14 en 10 um. Presente solamente en el Río Ca-

rampongue y en la poza cercana a él, “rara”.

Taxon de aguas dulces, generalmente en aquellas con pH 6.5-8.4.

Distribución conocida para Chile: Provincia de Santiago (ESPINOSA, 1923).

Río Andalién; Río Bío-Bío; Laguna Lo Méndez (RIVERA, 1974b). Bahía de

Dichato (RIVERA, 1974a). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973).

Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975). Concepción y al-

rededores (PARRA et al., 1974). Lago Ranco (RIVERA, 1970). Trípoli en

Puyehue (FRENGUELLI, 1935).

Denticula subtilis Grunow

Fig. 18

Grunow, A., Verh. Zool.- Bot. Ges. Wien, 12: 550, Lám. 12. fig. 36 (1862).

Valvas lanceoladas, angostas, 7-12 um de largo y 2.5-3 um de ancho

en el material analizado. Rafe excéntrica, muy cercana al margen de la

valva. Costillas notorias cruzando la valva, 7-9 en 10 um (6-9 según la li-

teratura). Estrías muy finas, 28-29 en 10 um, formadas de puncta. Muy es-

casa en el Río Chivilingo y Río Laraquete, pero típica por sus pequeñas

valvas con extremos agudos. ;

Taxon de aguas salobres, común en estuarios.

Distribución conocida para Chile: Arroyo Toro, Patagonia (MUELLER, 1909).

Detonula pumila (Castracane) Schútt

Schitt, F., Bacill., in Engler 4 Prantl, p. 83, fig. 135 (1896).

Sinonimia: Schroederella delicatula (Peragallo) Pavillard, J., Bull. Soc. Bot.

France, 60: 126, fig. 1A (1913).

Schroederella delicatula f schroederi (Bergon) Sournia, A.,

Mém. O.R.S.T.O.M,, 31: 61, Lám. 1, fig. 4 (1968).

Diámetro valvar 20-27 um; procesos marginales 7-8 en 10 um, estrías

23-24 en 10 um. Rivera (1978) ya señaló a esta especie para los Ríos Chi-

vilingo y Laraquete haciendo comentarios sobre su estructura en base a

observaciones con el microscopio fotónico y electrónico de transmisión.

Marina, es un componente regular del plancton nerítico de la costa

chilena.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1978.

Diatoma tenue Agardh

Fig. 78

Agardh, C.A., Sw. Bot., Vol. 7, Lám. 491, fig. 4-5 (1812).

Sinonimia: Diatoma elongatum var. tenue (Agardh) Van Heurcx, Syn.

Diat. Belgique, p. 160 (1885).

Diatoma elongatum var. tenuis f minus (Gunow) Mayer,

A., Ber. Bayer. Bot. Ges., 24: 101, Lám. 2, fig. 35-38 (1940).

Eje apical 21-22 um; transapical 4 um, costillas 9-11 en 10 um. Presente

en los Ríos Chivilingo y Laraquete, "rara”.

Taxon de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo; Bahía de Dichato;

Bahía de Concepción; Estero Lenga; Isla Santa María; Río Tubul (RIVERA,

1974a). Río Bío-Bío (RIVERA, 1974b). Desembocadura del Río Bío-Bío (RI-

VERA 4 ARCOS, 1975). Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; Río

Pascua; Río Tronador; Cerca de Puyuhuapi (KRASSKE, 1939). Posa entre

Tweedie y Kark (MUELLER, 1909).

Diploneis chersonensis (Grunow) Cleve

Cleve, P.T., Sv. Vet. Akad. Handl., N.F., 26(2): 91 (1894).

Sinonimia: Navicula apis Donkin, A., Nat. Hist. Brit Diat., pág. 48, Lám. 7,

fig. 3 (1871-1872).

Navicula apis (Ehrenberg) Kiitzing, F.T., Bacill., p. 100, Lám.

28, fig. 76 (1844).

Los escasos ejemplares encontrados en los Ríos Chivilingo y Laraque-

te concuerdan plenamente con el taxon de Cleve (loc. cit.) y en especial

con la variación de él mostrada por Hustedt (1937, Rabenh. Krypt. Flora,

7(2): 709, fig. 1088 a-h). En nuestros ejemplares existen solamente 1 a 2

líneas longitudinales que cortan a las costillas, las cuales se encuentran en

número de 12-13 en 10 um. Las valvas, de regular tamaño (30-45 um de lar-

go, 11-20 um de ancho), presentan el típico contorno panduriforme.

Se le encuentra en aguas salobres y marinas, especialmente en costas

arenosas; amplia distribución mundial.

Distribución conocida para Chile: Valparaíso (SCHMIDT in A.S.A., 1885).

Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Diploneiís ovalis (Hilse) Cleve

Cleve, P.T., Acta Soc. Fauna Flora Fenn., 8(2): 44, Lám. 2, fig. 13 (1891).

Eje apical 34 um; transapical 16 um; costillas 11-12 en 10 um; poros

15-16 en 10 um. Muy raro, presente sólo en la muestra N* 10 (poza cercana

al Río Carampangue).

En aguas dulces o levemente salobres.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Calama,

caliza lacustre (FRENGUELLI, 1938b). Calle en San Vicente; Corral; Lago

Puyehue; Termas de Puyehue; Lago Llanquihue; Río Puelo; Lago Risopatrón;

Provincia de Aysén al interior del fiordo de Puyuhuapi; Afluente del Lago

Risopatrón; Río Pascua; Cerca de Puyuhuavi; 40 kilómetros al Norte del

Puerto de Puyuhuapi; Puyuhuapi (KRASSKE, 1939). Calbuco (KRASSKE,

1939 y 1941). Trípoli en Isla de Cailín frente a Quellón, Chiloé (FRENGUE-

LLI, 1935). Monte Tronador; Río Alerce; Lago General Carrera; Mallín Chi-

leno; Río Rubens; a 10 kilómetros de Río Rubens; a 67 kilómetros de Punta

Arenas; San Isidro, Cabo Troward (KRASSKE, 1949).

Diploneis subovalis Cleve

Cleve, P.T., Sv. Vet.-Akad. Handl., N.F., 26(2): 965, Lám. 1, fig. 27 (1894).

Eje apical 29-34 um; transapical 15-16 um; estrías 11-12 en 10 um; poros

25-26 en 10 um. Presente en los Ríos Laraquete y Carampangue, siempre

en escasa cantidad.

Especie de aguas dulces, común en lagos, arroyos y manantiales del

sur de Chile.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975).

Laguna Lo Méndez (PARRA et al., 1976).

Entopyla australis (Ehrenberg) Ehrenberg

Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 8 (1848).

Eje apical 75.0-91.2 um; costillas 2-3 en 10 um. Encontrada sólo en la

muestra N?* 6 del Río Laraquete, “rara”.

Marina, epífita.

Distribución conocida para Chile: Bahía de San Vicente (KRASSKE, 1941).

Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973; RIVERA, 1974a). Bahía de

Dichato (KRASSKE, 1941; RIVERA, 1974a). Bahía de Concepción; Isla San-

ta María; Río Tubul; Río Quenuir; Río Pudeto; Golfo de Quetalmahue (Rl-

VERA, 1974a).

Epithemia zebra (Ehrenberg) Kitzing

Kutamg,F.T.,. Barcill.,p. 34, LM. 9, 119. 12,0 ae (1844).

Eje apical 40-54 um; transapical 11-13 um; costillas 3-5 en 10 um; es-

trías 12 en 10 um; entre costillas hay 2-4 estrías. Presente en los Ríos lLara-

quete y Carampangue, “rara”.

Taxon de aguas dulces y salobres, especialmente en las estancadas

cosmopolita.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Desembocadura del Río

Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975). Concepción y alrededores (PARRA et al,

1974). Río Cullen (CLEVE, 1900).

Eunotia major (Wm. Smith) Rabenhorst

OL 77

Rabenhorst, L. Fl. Europea Alg., 1: 72 (1864).

Sinonimia: Eunotia monodon var. major (Wm. Smith). Hustedt, F., Suússw.-

Flora Mitteleuropas, 10(2): 186, fig. 255 (19830).

Valvas usualmente grandes, 125-130 um de largo y 10-12 um de ancho,

con el margen. ventral cóncavo y el dorsal convexo, paralelos entre sí, Y

con extremos capitados, redondeados o levemente aguzados. Nódulos ter-

minales notorios. Estrías paralelas en casi toda la valva, algo radiales en

los extremos, 10-12 en 10 um (8-14 según la literatura), formadas de toscos

puncta.

Las escasas valvas observadas provienen exclusivamente del Río Ca-

rampeoangue. Taxon común en las aguas dulces con bajo contenido mineral.

Distribución conocida para Chile: Trípoli en Isla Cailín frente a Quellón,

Chiloé (FRENGUELLI, 1935). Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Monte Tronador; Isla Dawson; Río Alerce (KRASSKE, 1949).

Eunotia tenella (Grunow) Hustedt

Fig. 19

Hustedt, F. in A.S.A., Lám. 287, fig. 20-25 (1913).

Sinonimia: Eunotia arcus var. hybrida Grunow, A. in Van Heurck, Syn.

Diat. Belgique, Lám. 34, fig. 4 (1881).

Eje apical 14.0-17.5 um; transapical 3.5 um; estrías 15-19 en 10 um. Pre-

sente en los Ríos Chivilingo y Laraquete, y en la poza cercana al Río Ca-

rampangue; “rara” en todas las muestras.

Taxon de aguas dulces, común en pantanos.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Citas adicionales: Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Fragilaria vaucheriae (Kiitzing) Petersen

Figs. 20-22

Petersen, J.B., Bot. Not., 1938, (1/3): 167, fig. 1 c-g (1938).

Sinonimia: Synedra vaucheriae (Kiitzing) Kutzing, F.T., Bacill., p. 65, Lám.

14(4), fig. 1, 2a, 3 (1844).

Fragilaria mutabilis var. intermedia (Grunow) Grunow, A.,

Verh. Zool.-Bot Ges. Wien, 12: 369, Lám. 7, fig. 9 a-c (1862).

Fragilaría intermedia Grunow, A. in Van Heurck, Syn. Diat.

Belgique, Lám. 45, fig. 9-11 (1881).

Eje apical 13-28 um; transapical 3.0-4.8 um; estrías 14-17 en 10 um. Pre-

sente en los Ríos Laraquete y Carampangue predominando las formas de

pequeño tamaño.

Taxon de aguas dulces, desarrollándose mejor a bajas temperaturas.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli de

San Pedro de Atacama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1934). Estero Lenga

(RIVERA en RIVERA et al., 1973). Río Bío-Bío; Laguna La Posada (RIVERA,

1974b). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975). Bahía de

Coliumo; Termas de Puyehue; Lago Rupanco; Estación Pellines; Río Puelo;

Calbuco; Cerca de Puyuhuapi; Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopa-

trón; Río Pascua; Río Tronador; Río de Ventisquero Eisach (KRASSKE, 1939).

Puyuhuapi (KRASSKE, 1941). Posa Kark; Río Baguales y sus afluentes; Arro-

yo Toro; Posa Chico (Mueller, 1909). Mallín Chileno; a 67 kilómetros de

Punta Arenas (KRASSKE, 1949).

Frustulia rhomboides (Ehrenberg) De Toni var. rhomboides

Figs. 80-81

De Toni, G.B., Syll. Alg., 2(1): 277 (1891).

Sinonimia: Navicula rhomboides Ehrenberg, C.G. Abh. Kónigl. Akad. Wiss.

Berlin, 1841, p. 419, Lám. 3(1), fig. 15 (1843).

Esta hermosa especie, de valvas rómbico-lanceoladas, se caracteriza

por sus estrías perpendiculares a la rafe en la parte media de la valva y

radiales en los extremos, 26-28 en 10 um (tanto las transversales como las

longitudinales). Largo 80-140 um; ancho 17-26 um. Fue encontrada en los

Ríos Chivilingo y Carampangue, siempre en escasa cantidad.

Taxon de aguas dulces, especialmente en aquellas un tanto ácidas.

Distribución conocida para Chile: Corral; Termas de Puyehue; Lago Llan-

quihue; Calbuco; 5-8 kilómetros al norte de Calbuco ¡Puyuhuapi; al S.W.

del Puerto de Puyuhuapi; 40 kilómetros al norte del Puerto de Puyuhuapi;

Cerca de Puyuhuapi; Provincia de Aysén al interior del fiordo de Puyu-

huapi; Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; Río Pascua; Río Tro-

nador; Río de Ventisquero Eisach; Isla Puluqui (KRASSKE, 1939). Tierra del

Fuego (CLEVE-EULER, 1948). Lago Pehoé; Lagunas II y Il próximas a la

Cordillera de Paine; Lago Sarmiento; Lago Quilleihue; Río Cisnes (ASPREY

et al., 1964). Bahía Orange, Cabo de Horno (PETIT, 1889). Río Grande; Río

Cullén (CLEVE, 1900). Lago Lynch; Río Alerce; Isla Dawson; 4-5 kilómetros

al S.W. de Bahía Inútil (KRASSKE, 1949).

Frustulia rhomboides var. saxonica (Rabenhorst) De Toni

Fig. 82

De Toni, G.B., Syst. Alg., 2(1): 277 (1891).

Difiere de la variedad tipo por su tamaño más reducido y por sus es-

trías más numerosas, 32-34 en 10 um las transversales y 38 en 10 um las

longitudinales. El contorno valvar sigue siendo rómbico-lanceolado, pero a

diferencia del tipo, los extremos son débilmente producidos, redondeados.

Largo 80-95 um, ancho 14-21. Escasa en el material estudiado, presente en

los Ríos Laraquete y Carampangue.

Taxón de aguas dulces, un tanto ácidas.

Distribución conocida para Chile: Corral; Termas de Puyehue; Lago Ru-

panco; Lago Llanquihue; Pelluco, Puerto Montt; Calbuco; 5-8 kilómetros al

norte de Calbuco; Puyuhuapi; 40 kilómetros al norte del Puerto de Puyu-

huapi; Al S.W. del Puerto de Puyuhapi; Provincia de Aysén al interior del

fiordo de Puyuhuapi; Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; Río

Pascua; Río de Ventisquero Eisach; Río Puelo; Isla Puluqui; Bosque de llu-

vias del sur de Chile (KRASSKE, 1939). Río Alerce; Isla Dawson; 4-5 kiló-

metros al S.W. de Bahía Inútil (KRASSKE, 1949). Lago Pehoé; Lagunas Il y

III próximas a la Cordillera de Paine; Lago Sarmiento; Lago Quilleihue; Río

Cisnes (ASPREY et al., 1964).

Frustulia vulgaris (Thwaites) De Toni

Figs. 4, 83

De Toni, G.B., Syll. Alg., 2(1): 280 (1891).

Eje apical 30.0-61 um; transapical 7-12 um; estrías transversales 24-26

en 10 um al centro y 28-32 en 10 um en los extremos; estrías longitudinales

31-32 en 10 um. Fue "común” en el Río Chivilingo y “rara” en muestras de

los Ríos Laraquete y Carampangue.

Taxon de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Concepción y alrededores (PARRA et al., 1974).

Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA £ ARCOS, 1975).

Gomphonema hebridense Gregory

Gregory, W., Quart. J. Microscop. Sci., 2: 99, Lám. 4, fig. 19 (1854).

Eje apical 41-51 um; transapical 6-7 um; estrías en el centro 10-11 en

10 um; en los extremos 13-14 en 10 um. Las escasas valvas observadas pro-

vienen de la muestra N?* 8 del Río Carampangue.

Taxon de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: Laguna La Posada (RIVERA, 1974b).

Gomphonema herculeanum var. robustum Grunow

Fig. 84

Grunow, A. in Schneider, Naturw. Beitr. zur Kennt. Kaukasuslánder, p. 109,

Lám. 3, fig. 3 (1878).

Se diferencia de la variedad tipo por sus valvas más ampliamente

lanceoladas con un extremo ancho, redondeado-truncado, y el extemo ba-

sal más angosto, redondeado. En general la valva es más clavada y más

corta que en la variedad herculeanum. Largo 38-69 um; ancho 16-18 um.

Area axial angosta; área central redondeada, pequeña. Estrías radiales en

toda la valva, 12-13 en 10 um; líneas longitudinales marginales o submar-

ginales.

Variedad de aguas dulces prefiriendo al parecer las más frías. Presen-

te en los Ríos Laraquete y Carampangue.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

Gomphonema herculeanum var. septiceps Schmidt

Figs. 85-86

Schmidt, M. in A.S.A., Lám. 215, fig. 13-14 (1889).

Taxón muy cercano a la variedad tipo, distinguiéndose solamente por

sus valvas más lanceoladas y por su área central más alargada, lanceo-

lada. En el material estudiado sus medidas fueron: largo 60-99 um; ancho

18-19 um; estrías 11-12 en 10 um; puncta 21-22 en 10 um.

Fue encontrado con abundancia relativa de “raro” en las muestras

Ne 5, 6 y 7 del Río Laraquete, pero fue "común” en todas als del Río Ca-

rampoangue (N* 8, 9 y 10).

No había sido señalada anteriormente para Chile.

Gomphonema parvulum (Kiútzing) Kiútzing

Kitzing, F.T., Sp. Alg., p. 65 (1849).

Sinonimia: Gomphonema micropus Kútzing, F.T., Bacill., p. 84, Lám. 8, fig.

12 (1844).

Gomphonema parvulum var. micropus (Kiútzing) Cleve, P.T.,

Sv. Vet.-Akad. Handl., N.F., 26(2): 18 (1894).

Gomphonema parvulum var. subellipticum Cleve, P.T., Sv.

Vet.-Akad. Handl., N.F., 26(2): 180 (1894).

Gomphonema parvulum var. lagenulum kFrenguelli, J., Bol.

Acad. Nac. Cienc. Córdoba, 27: 68, Lám. 6, fig. 16 (1923).

Eje apical 23-27 um; transapical 7 um; estrías 14-15 en 10 um. Presente

sólo en el Río Carampangue, “raro”.

Taxon de aguas dulces, también en aguas contaminadas.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli de

Calama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1930). Trípoli de San Pedro de Ataca-

ma, Antofagasta (FRENGUELLI, 1934). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA

et al., 1973; RIVERA, 1974a).Laguna Pineda; Arroyo Leonera; Laguna La Po-

sada; Río Andalién; Río Bío-Bío (RIVERA, 1974b). Concepción y alrededores

(PARRA et al., 1974). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS,

1975). Bahía de Coliumo; Calle en San Vicente; Lago Puyehue; Termas de

Puyehue; Lago Llanquihue; Calbuco; Puyuhuapi; Cerca de Puyuhuapi; Fior-

do de Reloncaví; Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; Río Pascua;

Río de Ventisquero Eisach; Ventisquero Jacaf; Río Puelo; Bosque de lluvias

del sur de Chile (KRASSKE, 1939). Trípoli en Isla Chiloé (FRENGUELLI,

1930). Trípoli en Isla Cailín frente a Quellón, Chiloé (FRENGUELLI, 1935).

Tierra del Fuego (CLEVE-EULER, 1948). Posa entre Tweedie y Kark (MUE-

LLER, 1909). Río Alerce; Mallín Chileno; Lago General Carrera; Lago Linch;

Monte Tronador; a 67 kilómetros de Punta Arenas; Isla Dawson; 4-5 kilóme-

tros al S.W. de Bahía Inútil (KRASSKE, 1949). Río 'Tres Puentes, Punta Are-

nas (FRENGUELLI, 1923).

Gomphonema pseudoexiguum Simonsen

Simonsen, Kieler Meeresforsch., 15(1): 83, Lám. 12, fig. 8-9 (1959).

Eje apical 7.0-16.0 um; transapical 2.0-2.5 um; estrías 17-19 en 10 um.

Presente en los Ríos Chivilingo y Laraquete, “rara”.

Especie marina, epífita.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo; Bahía de Dichato;

Bahía de Concepción; Isla Santa María; Río Tubul; Río Quenuir; Río Pudeto;

obtenido con el

Estereopar

Frustulia vulgaris (Thw.) De Toni.

g. 4—

microscopio electrónico de transmisión.

Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA

et al., 1973; RIVERA, 194a).

Grammatophora angulosa Ehrenberg

Ehrenberg, C.G., Abh. Kónigl. Akad. Wiss. Berlin, 1839, p. 154 (1841).

Eje apical 23-26 um; estrías 15-16 en 10 um. Presente sólo en algunas

muestras del Río Laraquete, siempre en escasa cantidad.

Especie marina de aguas templadas, epífita y también planctónica.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Tiltil, Trípoli de Mejillones

(FRENGUELLI, 1949). Bahía de Valparaíso (KUTZING, 1844, GAY, 1854).

Bahía de Coquimbo; Bahía de Dichato; Isla Santa María; Río Tubul; Río

Quenuir; Río Pudeto; Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a). Bahía de

Concepción (RIVERA, 1969). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973,

1974a). Calbuco; Cerca de Puyuhuapi (KRASSKE, 1939). Ensenada Wilson,

Magallanes (CAMPODONICO et al., 1975). Bahía Orange, Cabo de Hornos

(PETIT, 1889).

Grammatophora marina (Lyngbye) Kitzing

Kútzing, F.T., Bacill., p. 128, Lám. 17, fig. 24; Lám. 18, fig. I, 1-5 (1844).

Sinonimia: Grammatophora mexicana Ehrenberg, C.G., Abh. Kónigl. Akad.

Wiss. Berlín, p. 443 (1841).

Eje apical 66-69 um; estrías 19 en 10 um. “Rara” en los Ríos Chivilin-

go y Laraquete.

Marina, litoral, epífita pero a veces planctónica, cosmopolita.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Tiltil; Trípoli de Mejillones

(FRENGUELLI, 1949). Bahía de Iquique; Bahía de San Vicente; Golfo de

Arauco; Golfo de Dalcahue (KRASSKE, 1941). Bahía de Coquimbo; Isla San-

ta María; Río Tubul; Río Quenuir; Río Pudeto; Golfo de Quetalmahue (RIVE-

RA, 1974a). Bahía de Valparaíso (AVARIA, 1965 y 1971). Bahía de San An-

tonio (MONTECINO € LOPEHANDIA, 1972). Bahía de Dichato (KRASSKE,

1941; RIVERA, 1974a). Bahía de Concepción (KRASSKE, 1941; RIVERA, 1959

y 1974a). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973; RIVERA, 1974a).

Canal El Morro, Talcahuano (PARRA et al., 1978). Calbuco (KRASSKE, 1939

y 1941). Cerca de Puyuhuapi; Isla Llancahue; Lago Risopatrón (KRASSKE,

1939). Río Cullén (CLEVE, 1900). Magallanes (LEMBEYE et al., 1975). Ense-

nada Wilson, Magallanes (CAMPODONICO et al., 1975). Estrecho de Maga-

llanes (DE TONI 4 LEVI, 1884). Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Viviendo sobre Gracilaria (KIM, 1970).

-42

Gyrosigma balticum (Ehrenberg) Rabenhorst

Fig. 87

Rabenhorst, L., Sússw. Diat., p. 47, Lám. 5, fig. 6 (1853).

Sinonimia: Pleurosigma baltica (Ehrenberg) Wm. Smith, Ann. Mag. Nat.

Hist.,¿Servi2, GUBALGEa Ve, id, 1DU(IBS2)

Eje apical 226 um; transapical 26 um; estrías longitudinales 15 en 10

um, tranversales 15 en 10 um. La única valva encontrada proviene del

Río Chivilingo.

En aguas marinas y salobres, abundante en estuarios, cosmopolita.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA en RIVERA et al., 1973.

Citas adicionales: Ensenada Wilson (CAMPODONICO et al. 1975).

Gyrosigma eximioides Rivera

Figs. 88-89

Rivera, P., Gayana, Bot. 28: 37, fig. 50 (1974b).

Eje apical 108-112 um; transapical 13-14 um; estrías transversales 25-26

en 10 um; longitudinales 30 en 10 um. Concuerda plenamente con el tipo, la

forma de sus nódulos polares es característico. Fue encontrada en el Río

Laraquete, Río Carampangue y en la poza cercana a este último río, “rara”.

Taxon de aguas dulces de ecología aún poco conocida.

Distribución conocida para Chile: señalada solamente para la localidad ti-

po, Arroyo Leonera (RIVERA, 1974b).

Gyrosigma terryanum í. fontanum Reimer

Pig. 90

Reimer, C. in Patrick 4 Reimer, Monogr. Acad. Nat. Sci. Phila., 13(1): 326,

Lám. 25, fig. 4 (1966).

Se diferencia exclusivamente de la forma tipo por sus valvas de menor

tamaño: 270-285 um de largo según Reimer, 284-286 um en el material por

nosotros analizado; ancho 34 um; estrías 14 en 10 um.

Fue encontrada con abundancia de “rara” en una muestra del Río Chi-

vilingo y en una del Río Laraquete. Es un taxon de aguas dulces de eco-

logía aún no bien conocida; no había sido señalada anteriormente para

Chile.

Hantzschia virgata (Roper) Grunow

Figs. 91-92

Grunow, A., in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet-Akad. Handl., 17(2): 104 (1880).

Sinonimia: Nitzschia virgata Roper, F.C.S., Quart. Jour. Micr. Sci., 6: 23,

Lám. 3, fig. 6 (1858).

Valvas lineares o sublineares con el lado ventral biarqueado y el lado

dorsal levemente convexo, y con extremos claramente producidos, alarga-

dos y algo curvados hacia el lado dorsal. Fibulae alargadas, 6-7 en 10 um

(4-6 según la literatura), en el medio más cortas que hacia los extremos

donde llegan hasta la mitad del ancho de la valva. Estrías notorias, 11-12

en 10 um (8-10 según Hendey 1964, 9-11 según Cleve-Euler, 1952). Largo

42-60 um; ancho 5.5-9 um. Presente en los Ríos Chivilingo y Laraquete; bas-

tante escasa.

Especie marina, litoral.

Distribución conocida para Chile: Tierra del Fuego (HUSTEDT in A.S.A.,

1921). Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Hyalodiscus kerguelensis Karsten

Karsten, G., Valdivia Antarkt. Exped., 2(2): 74, Lám. 2, fig. 6-7 (1905).

Diámetro valvar 140 um; diámetro umbilico 65 um; líneas de areolas

27-28 en 10 um. Se encontró un solo frústulo en la muestra N? 6 del Río

Laraquete.

Especie marina.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Dichato; Bahía de Concepción

(RIVERA, 1974a). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973; RIVERA,

1974a).

Licmophora abbreviata Agardh

Lia. 28

Agardh, C.A., Conspect. Crit. Diat., p. 42 (1831).

Sinonimia: Licmophora lyngbye: (Kútzing) Grunow, A., Hedwigia, 6: 35

(1867). (

Licmophora lyngbye: var. elongata Grunow, A. in Van Heurck,

Syn. Diat. Belgique ¡Lám. 47, fig. 21 (1881).

Eje apical 54.0-56.5 um; transapical 11-13 um; estrías 8-10 en 10 um.

Presente exclusivamente en muestras del Río Laraquete, “rara”.

Especie marina, epífita y epizoica pero a veces planctónica, cosmopo-

lita eurioica.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo; Bahía de Dichato;

Estero Lenga; Río Tubul; Río Quenuir; Golfo de Ouetalmahue (RIVERA,

1974a). Bahía de Concepción (RIVERA, 1969 y 1974a). Caleta Leandro, Tum-

bes (RIVERA, 1975). Canal El Morro, Talcahuano (PARRA et al., 1978). Ba-

hía Gualaihué (AVARIA, 1970). Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT,

1889).

Licmophora juergensii Agardh

Fig. 24

Agardh, C.A., Conspect. Crit. Diat., pág. 42 (1831).

Valvas en forma de maza con los lados más o menos paralelos; extre-

mo superior ampliamente redondeado y extremo inferior suavemente ros-

trado, redondeado. Estrías transapicales notorias, rectas y perpendiculares

al eje apical, 16-17 en 10 um (14-18 según la literatura), formadas de noto-

rias puncta. Pseudorafe muy angosto. Largo 42-50 um; ancho 6-9 um.

Se caracteriza por sus estrías formadas de notorios puncta y por la

forma de las valvas. Fue encontrada solamente en la muestra N* 6, cerca

de la desembocadura del Río Laraquete, y en escasa comtidad.

Especie marina, litoral, de amplia distribución en las costas europeas.

No había sido señalada anteriormente para Chile.

Melosira granulata var. angustissima Mueller

Fig. 25

Mueller, O., Hedwigia, 38: 315, Lám. 12, fig. 28 (1899).

Difiere de la variedad tipo por su menor diámetro, 2.5-6 um, siendo la

proporción diámetro: largo de la célula hasta de 1: 10. Ornamentación

dispuesta en líneas un tanto espiraladas, 14-15 en 10 um. Largo de las cé-

lulas 22-33 um.

Taxón muy poco señalado para Chile pero seguramente confundido

con la variedad tipo, la cual si tiene una amplia distribución en el país.

Fue encontrada exclusivamente en el Río Carampangue y en escasa can-

tidad.

Variedad de aguas dulces, especialmente en el plancton de las aguas

eutróficas.

Distribución conocida para Chile: Lago Quillehue (THOMASSON, 1963).

Melosira nummuloides (Dillwyn) Agardh

Agardh, C.A., Syst. Alg., p. 8 (1824).

Diámetro valvar 10-22 um. Presente en los Ríos Chivilingo y Laraquete,

siempre en escasa cantidad.

Especie marina y de aguas mixohalinas, epífita.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Dichato, Puyuhuapi (KRASSKE,

1941). Calbuco (KRASSKE, 1939 y 1941). Entre Ramuncho y Talcahuano;

8 kilómetros al norte de Calbuco; Isla Llancahue; Lago Risopatrón (KRASS-

KE, 1939). Río Pudeto; Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a).

Melosira sol (Ehrenberg) Kiitzing

Figs. 93-94

Kitzing, F.T., Sp. Alg., p. 31 (1849).

Células muy silificadas, unidas en cadenas de largo variable, 33-55 um

de diámetro en el material estudiado pero señalado en la literatura como

de 30-96 um; eje pervalvar corto, 6-11 um de largo. Valvas planas o leve-

mente cóncavas, provistas de costillas radiales que nacen desde el margen

y alcanzan aproximadamente hasta la mitad del radio, 5-8 en 10 um, de-

jando al centro de la valva un espacio hialino; margen valvar con estrías

muy finas, aproximadamente 24 en 10 um, las cuales se continúan en el

manto valvar.

Hustedt (1927, p. 272) describe tres tipos de variaciones que se pue-

den presentar en este taxón en cuanto a su morfología y ornamentación,

lo que demuestra su gran variabilidad. He tenido oporiunidad de revisar

en Bremerhaven el material de Hustedt marcado como '“Al/94, R.M., Abelie

Land, Siudl. Eismeer, 12.6.22”, el cual concuerda plenamente con el nues-

tro.

Especie marina, ampliamente distribuida en las aguas tempe:adas y

frías.

Fue encontrada en la desembocadura del Río Laraquete y también

en muestras de Gracilaria verrucosa proveniente de la Bahía de Concep-

ción y Bahía Coliumo.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Mejillones (TEMPERE € PERA-

GALLO, 1907; FRENGUELLI, 1949). Bahía de Dichato; Bahía de San Vicente;

Golfo de Dalcahue (KRASSKE, 1941). Calbuco (KRASSKE, 1939).

Melosira varians Agardh

Agardh, C.A., Syn. Alg. Scandinaviae, p. 78 (1817).

Diámetro valvar 12-20 um; eje pervalvar 21-25 um. Presente solo en las

muestras del Río Carampangue y en la poza cercana a él (muestra N* 10),

“rara” en todas ellas.

Especie de aguas dulces y salobres, bentónica.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Provincia

de Santiago (ESPINOSA, 1923). Bahía de Concepción (RIVERA, 1969 y 1974a).

Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Río Andalién; Río Bío-Bío

(RIVERA, 1974b). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975).

Laguna Lo Méndez (RIVERA, 1974b); Lago Ranco (RIVERA, 1967 y 1970).

Laguna La Laja (RIVERA, 1970). Lago Villarrica (THOMASON, 1963). Lago

Riñihue (CAMPOS et al,. 1974. Lago Fagnano (THOMASSON, 1955).

Meridion circulare var. constricta (Ralís) Van Heurck

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belgique, Lám. 51, fig. 14-15 (1885).

Sinonimia: Meridion constrictum Ralís, J., Ann. Mag. Nat. Hist.,, 12: 458,

Lám. 18, fig. 2 (1843).

Eje apical 19 um; transapical 5.5 um; costillas 5-6 en 10 um, estrías 16

en 10 um. La única valva encontrada proviene de una muestra del Río La-

raquete.

Variedad propia de las aguas dulces y salobres, cosmopolita.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción (RIVERA, 1969).

Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Río Bío-Bío (RIVERA, 1974b).

Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975). Río Baguales

y sus afluentes, Patagonia (MUELLER, 1909). Mallin Chileno; A 10 kilóme-

tros de Río Rubens; A 67 y a 100 kilómetros de Punta Arenas (KRASSKE,

1949).

Navicula auriculata Hustedt

Figs. 95-96

Hustedt, F., Ber Deutsch. Bot. Ges., 61(5): 273, fig. 4 (1944).

Eje apical 11-5-12.0u m; transapical 6 um; estrías 17-19 en 10 um. Pre-

sente en los Ríos Chivilingo y Laraquete, generalmente “rara” pero 'co-

mún” en la muestra N? 3.

Especie marina.

Distribución conocida para Chile: Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al,

1973).

Navicula bahusiensis (Grunow) Grunow

Figs. 97-98

Grunow, A., Denschr. Akad. Wiss. Wien, Math. Nat. Kl., 48: 104 (1884).

Valvas elíptico-llanceoladas con extremos suavemente producidos, sub-

rostrados, redondeados. Area axial muy angosta; area central pequeña o

ausente, con un estigma aislado. Rafe derecha, filiforme, fisuras proxima-

les cercanas. Estrías finas, levemente radiales en toda la valva, 2324 en

10 um. Largo 16-18 um; ancho 6-7 um.

Taxon de aguas salobres ampliamente distribuido en las costas eu-

ropeas.

Fue encontrado en los Ríos Chivilingo y Laraquete con abundancia

de “rara”. No había sido señalado anteriormente para Chile.

Navicula cryptocephala Kitzing var. eryptocephala

Fig. 27

Kútzing, F.T., Bacill., p. 95, Lám. 3, fig. 20, 26 (1844).

Valvas lanceoladas con extremos angostos, rostrados o rostrado-capi-

tados, 22-28 um de largo y 5-6 um de ancho. Area axial angosta; área cen-

tral algo ensanchada con un lado redondeado y el otro algo irregular. Es-

trías radiales en casi toda la valva, claramente lineadas, 15-16 en 10 um,

en los extremos paralelas o convergentes. Fue encontrada exclusivamente

en el Río Carampangue, común en esas muestras y mostrando una variación

de los extremos valvares.

Taxon de aguas dulces o algo salobres, común en lagos, ríos etc.; am-

plia distribución.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli

a 2 kilómetros de Chorrillos, Calama; Trípoli del Salar de Ollagiie (FREN-

GUELLI, 1929). Trípoli de Calama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1930). Calle

en San Vicente; Termas de Puyehue; Lago Rupanco; Lago Llanquihue; Cal-

buco; Provincia de Aysén al interior del fiordo de Puyuhuapi; Al S.W. del

Puerto de Puyuhuapi; Afluente del Lago Risopatrón; Isla Puluqui; Río Puelo;

Isla Llancahue; Río Pascua (KRASSKE, 1939). Río Baguales y sus afluentes;

Posa Chico; Río Tres Pasos; Posa entre Kark y Tweedie (MUELLER, 1909).

Lago General Carrera; A 10 kilómetros de Río Rubens (KRASSKE, 1949).

Navicula cryptocephala var. veneta (Kitzing) Rabenhorst

Fig. 99

Rabenhorst, L., Fl. Europaea Alg., 1: 198 (1864).

Difiere de la variedad tipo principalmente por sus extremos débilmente

producidos. Las valvas son generalmente linear-laceoladas, 18-26 um de

largo y 5.5-7.5 um de ancho. Estrías radiales en casi toda la valva pero

convergentes en los extremos, formadas de alvéolos, 15-17 en 10 um, los

cuales se abren hacia el interior y están cerrados al exterior por una mem-

brana con loculi alargados.

Fue abundante en una muestra del Río Chivilingo y común en otra

del Río Laraquete.

Variedad de aguas dulces pero más comúnmente encontrada en las

aguas salobres.

Distribución conocida para Chile: Calle en San Vicente; Termas de Puyehue;

Lago Rupanco; Lago Llanquihue; Calbuco; Provincia de Aysén al interior

del fiordo de Puyuhuapi; Afluente del Lago Risopatrón; Río Pascua; Isla

Puluqui; Río Puelo; Isla Llancahue (KRASSKE, 1939). Puyuhuapi (KRASSKE,

1941). Río Baguales y sus afluentes; Posa Kark (MUELLER, 1909). Lago Ge-

neral Carrera; Mallin Chileno (KRASSKE, 1949).

Navicula cuspidata (Kitzing) Kitzing var. cuspidata

Kútzing, F.T., Bacill., p. 94, Lám. 3, fig. 24, 37 (1844).

Sinonimia: Navicula ambigua Ehrenberg, C.G., Abh. Kónigl. Akad. Wiss.

Berlin, 1841, p. 417, Lám. 2(2), fig. 9 (1843).

Navicula cuspidata var. lanceolata Grunow, A., Verh. Zool.

Bot. Ges. Wien, 10: 529 (1860).

Navicula cuspidata var. ambigual Ehrenberg) Cleve, P.T., Sv.

Vet-Akad. Handl., N.F., 26(2): 110 (1894).

Eje apical 84 um; transapical 18 um; estrías transversales 15 en 10 um;

estrías longitudinales 28 en 10 um. Presente sólo en una muestra del Río

Carampangue, “rara”.

Taxón de aguas dulces, tolerante a un amplio rango de variaciones

del medio.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli

de San Pedro de Atacama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1934). Trípoli de Ca-

lama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1930). Bahía de Concepción (RIVERA,

1969). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Río Andalién; Río

Bío-Bío; Laguna Pineda; Laguna La Posada (RIVERA, 1974b). Concepción y

alrededores (PARRA et al., 1974). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA

£ ARCOS, 1975). Trípoli en Puyehue, Osorno (FRENGUELLI, 1935). Lago

Puyehue; Calbuco; 5-8 kilómetros al norte de Calbuco; Lago Risopatrón;

Afluente del Lago Risopatrón (KRASSKE, 1939). Tierra del Fuego (CLEVE-

EULER, 1948). Río Baguales y sus afluentes; Posa Chico; Arroyo junto a La-

guna Blanca (MUELLER, 1909). Lago General Carrera; A 10 kilómetros de

Río Rubens; Mallin Chileno; San Isidro, Cabo Troward (KRASSKE, 1949).

Navicula cuspidata var. heribaudil Peragallo

Peragallo, M. in Héribaud, J. Diat. d'Auvergne, p. 108, Lám. 4, fig. 16 (1893).

Sinonimia: Navicula cuspidata f. craticula Van Heurck, Syn. Diat. Bel-

gique, p. 100, Lám. 12, fig. 16 (1885).

Surirella ecraticula Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin,

1840, p.213 (1841).

Difiere de la variedad tipo por la mayor separación de las estrías en

la parte media de la valva. Largo 105-110 um; ancho 18-195 um. Estrías

longitudinales aproximadamente 22 en 10 um; estrías tranversales 13-14 en

10 um al centro y 17-18 en 10 um en los extremos.

Taxon de aguas dulces; fue encontrado exclusivamente en el Río Ca-

rampangue, 'rara”.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Valparaíso (KUTZING, 1844;

GAY, 1854). Laguna La Posada (RIVERA, 1974b). Lago General Carrera;

a 76 kilómetros de Punta Arenas (KRASSKE, 1949).

Navicula dicephala var. undulata Ostrup

Fig. 103

Ostrup, E. in Rosenvinge 4 Warming, Bot. of Iceland, 1(2): 25, Lám. 3, fig.

33 (1918).

Valvas linear-lanceoladas con los márgenes triondulados y extremos

rostrado-redondeados, 20-21 um de largo y 7-8 um de ancho. Area axial

muy angosta; area central ensanchada transversalmente y más ancha ha-

cia los márgenes de la valva. Estrías finamente lineadas, radiales en la

parte media, en los extremos casi paralelas, 10-14 um. Fue encontrada en

escasa cantidad en los Ríos Chivilingo y Laraquete.

Variedad de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: Calbuco; Lago Llanquihue (KRASSKE,

1939).

Navicula directa var. lata Ostrup

Figs. 101-102

Cstrup, E. Meddel. Gronland, 18: 427, Lám. 5, fig. 47 (1895).

Valvas linear-lanceoladas con extremos subagudos, aproximadamente

9-10 veces más largas que anchas. Area axial muy angosta; Area central

algo ensanchada, redondeada, a veces difícil de notar. Fisuras proximales

de la rafe cercanas entre sí. Estrías perpendiculares a la rafe en toda la

valva toscamente lineadas, 5-6 en 10 um. Largo 120-150 cm; ancho 11-15 um.

Se caracteriza por su área central redondeada y por el gran tamaño

de sus valvas.

Especie marina propia de las aguas frías. Fue encontrada en la de-

sembocadura de los Ríos Laraquete y Chivilingo, en escasa cantidad. No

había sido señalada anteriormente para Chile.

Navicula gottlandica Grunow

Fig. 26

Grunow, A. in Van Heurck, H., Syn. Diat. Belgique, Lám. 8, fig. 8 (1880).

Valvas lanceoladas con extremos suavemente producidos, subagudos,

24-42 um de largo y 6-8 um de ancho. Area axial muy angosta; area cen-

tral redondeada. Rafe derecha, filiforme. Estrías finamente lineadas, radia-

les en la parte media, 14-15 en 10 um, y convergentes en los extremos donde

son más numerosas.

Taxon de aguas dulces pero más común en las salobres, estuarinas.

Fue encontrado exclusivamente en el Río Laraquete, “raro”.

No había sido señalado anteriormente para Chile.

Navicula lateropunctata Wallace

Figs. 28-29

Wallace, J., Not. Nat. Acad. Nat. Sci. Phila., 331: 4, Lám. 2, fig. 3 A-B (1960).

Eje apical 18.5-23 um; transapical 7-8 um; estrías 18-19 en el centro,

más numerosas en los extremos. Presente en los Ríos Laraquete y Ca-

rampangue, “rara”.

Taxon de ecología aún poco conocida (agua dulce).

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974b.

Navicula mutica Kitzing

Kiitzing, F.T., Bacill., p. 93, Lám. 3, fig. 32 (1844).

Valvas elíptico-lanceoladas o lanceoladas con extremos levemente pro-

ducidos, redondeados. Area axial angosta, levemente más ensanchada ha-

cia el área media; área central dilatada transversalmente sin alcanzar el

margen y lleva un punctum aislado. Rafe angosta, con las fisuras proxima-

les levemente curvadas en la misma dirección. Estrías radiales 19-21 en

19 um formadas de nítidos puncta, irregulares en largo en el área central.

Largo 20-37 um; ancho 7-10 um.

Fue encontrada con abundancia relativa de “rara” en los Ríos Lara-

quete y Carampangue.

Taxon de aguas dulces, cosmopolita, a menudo también encontrada

en habitats marinos (Simonsen, 1974).

Distribución conocida para Chile: Bahía de Valparaíso (KRASSKE, 1941).

Ramuncho; Calle de San Vicente; Lago Puyehue; Termas de Puyehue; La-

go Rupanco; Lago Llanquihue; Calbuco; 5-8 kilómetros al norte de Calbuco;

Cerca de Puyuhuapi; Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón; Río

Puelo; Río Pascua; Río Tronador; Bosque de lluvias del sur de Chile (KRASS-

KE, 1939). Puyuhuapi (KRASSKE, 1939 y 1941). Posa Kark; Río Baguales y

sus afluentes (MUELLER, 1909). Río Alerce; Río Rubens; A 10 kilómetros de

Río Rubens; A 67 y a 100 kilómetros de Punta Arenas (KRASSKE, 1949).

Navicula palpebralis Brébisson ex Wm. Smith

Fig. 100

Smith. Wm., Syn. Brit. Diat., 1: 50, Lám. 31, fig. 273 (1853).

Eje apical 56-67 um; transapical 21-23 um; estrías 9-11 en 10 um. Bas-

tante escasa en el material estudiado, presente en los Ríos Chivilingo y

Laraquete.

Especie marina y de aguas mixohalinas.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción (RIVERA, 1969).

Estero Lenga, Río Pudeto; Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a). Desem-

bocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975). Bahía de Dichato; Gol-

fo de Dalcahue; Puyuhuapi (KRASSKE, 1941). Isla Llancahue; Lago Risopa-

trón; Río Tronador (KRASSKE, 1939). Calbuco (KRASSKE, 1939 y 1941).

Navicula pseudoreinhardti Patrick

Fig. $l

Patrick, R., Proc. Acad. Nat. Sci. Phila., 111: 104, Lám. 7, fig. 9 (1959).

Valvas anchamente lanceoladas con extremos redondeados, 1926 um

de largo y 6-7 um de ancho. Area axial muy angosta; area central de for-

ma irregular. Rafe derecha, filiforme, con las fisuras proximales cercanas.

Estrías lineadas, radiales y algo curvadas cerca de la parte media de la

valva, paralelas o levemente convergentes hacia los extremos; estrías 17-18

en 10 um (generalmente 18).

Taxon muy característico por la disposición de las estrías en la parte

media de la valva. En la mayoría de las valvas observadas, la estría media

a un lado de la rafe es más corta que las adyacentes, pero al otro lado es más

larga y alterna en longitud con las estrías adyacentes. En una sola valva

observamos que las estrías medianas, a ambos lados de la rafe, eran más

largas que las adyacentes.

Taxon de aguas dulces aparentemente señalado sólo para Carolina

del Sur, Florida. Fue encontrado en el Río Chivilingo (“rara”) y en el Río

Laraquete (“común”). No había sido señalado anteriormente para Chile.

Navicula pupula var. rectangularis (Gregory) Grunow

Fig. 30

Grunow, A. in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet-Akad. Handl., N.F. 17(2): 45 (1880).

Sinonimia: Navicula pupula var. bacillarioides Grunow, A. in Cleve «

Grunow, Sv. Vet-Akad. Handl., N.F., 17(2): 45 (1880).

Eje apical 40 um; transapical 10 um; estrías 22-24 en 10 um. Presente

exclusivamente en el Río Carampangue, “rara”.

Variedad de aguas dulces, especialmente en aquellas con alto conte-

nido mineral.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974b.

Citas adicionales: Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975).

Navicula pygmaea Kitzing

fia. 105

Kitzing, F.T., Sp. Alg., p. 77 (1849).

Eje apical 25-28 um; transapical 10-11 um; estrías 25-27 en 10 um. "RBara”

en el Río Chivilingo y “común” en la muestra N?* 3 del Río Carampangue.

Taxon de aguas marinas y salobres.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli

a 2 kilómetros de Chorrillos, Calama; Trípoli del Salar de Ollagúie; Trípoli

del Salar de Punta Negra, Antofagasta (FRENGUELLI, 1929). Valparaíso

(SCHMIDT in A.S.A., 1887). Bahía de Concepción (RIVERA, 1969). Calbuco

(KRASSKE, 1939).

Navicula rhynchocephala Kitzing var. rhynchocephala

Fig. 104

Kútzing, F.T., Bacill., p. 152, Lám. 30, fig. 35 (1844).

Eje apical 51-57 um; transapical 10-11 um; estrías al centro 8-10 en 10

um, en los extremos 11-13 en 10 um. Presente en los Ríos Chivilingo, Lara-

quete y Carampangue, siempre con abundancia relativa de “rara”,

Taxon de amplia distribución en las aguas dulces, también se la en-

cuentra en aguas salobres, cosmopolita.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli de

San Pedro de Atacama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1934). Estero Lenga (Rl-

VERA en RIVERA et al., 1973). Arroyo Leonera; Río Bío-Bío (RIVERA, 1974b).

Laguna La Posada (RIVERA, 1974b; PARRA et al., 1976). Concepción y al-

rededores (PARRA et al., 1974). Lago Llanquihue; Calbuco; 5-8 kilómetros

al norte de Calbuco; Lago Risopatrón; Afluente del Lago Risopatrón (KRASS-

KE, 1939). A 10 kilómetros de Río Rubens; Mallin Chileno; Isla Dawson; A

100 kilómetros de Punta Arenas; 45 kilómetros al S.W. de Bahía Inútil

(KRASSKE, 1949). Tierra del Fuego (CLEVE-EULER, 1948). Río Tres Puentes;

Punta Arenas (FRENGUELLI, 1923).

Navicula rhynchocephala var. amphiceros (Kuútzing) Grunow

Grunow, A. in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet.-Akad. Handl., N.F., 17(2): 33 (1880).

Eje apical 36-38 um; transapical 9-10 um, estrías 11-12 en 10 um. “Rara”

en el Río Carampangue y “común” en la muestra N* 10 (poza cercana al

mismo río).

Variedad de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Navicula spectabilis Gregory

Fig. 106

Gregory, W., Trans. Roy. Soc. Edinb., 21(4): 481, Lám. 9, fig. 10 (1857).

Eje apical 93 um; transapical 39 um, estrías 10-11 en 10 um. La única

valva observada proviene del Río Laraquete, “rara”.

Marina, litoral, de amplia distribución geográfica.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Navicula stankovicii var. chilensis Rivera

Rivera, P., Gayana, Bot., 25: 59, Lám. 16, figs. 182-184 (1974a).

Eje apical 38-60 um; transapical 8.0-9.Q um; estrías en el centro 9-12 en

10 um, en los extremos 12-13 en 10 um. Es una de las Navicula que se pre-

sentó con mayor abundancia en las muestras, “común” en los Ríos Chivi-

lingo y Laraquete.

Taxon de ecología aún poco conocida, al parecer propia de las aguas

salobres.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Navicula viridula (Kiútzing) Kiitzing emend. Van Heurck var. viridula

Figs. 107-108

Van Heurck, H., Syn. Diat. Belgique, Lám. 7, fig. 25 (1880). (texto p. 84, 1885).

Eje apical 33-48 um; transapical 9.0-10 um; estrías 10-11 en 10 um. Pre-

sente sólo en el Río Carampangue y en la poza cercana a él, siempre “rara”.

Taxon de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: Calama, caliza lacustre (FRENGUELLI,

1938b). Lago Rupanco; Lago Llanquihue; Calbuco; 5-8 kilómetros al norte de

Calbuco; Isla Llancahue; Provincia de Aysén al interior del fiordo de Puyu-

huapi; Cerca de Puyuhuapi; Río Pascua; Río Tronador; Río de Ventisquero

Eisach; Bosque de lluvias del sur de Chile (KRASSKE, 1939). Laguna Ill

próxima a la Cordillera de Paine (ASPREY et al., 1964). A 10 kilómetros

de Río Rubens (KRASSKE, 1949). Posa Kark; Río Baguales y sus afluentes;

Posa Chico; Arroyo junto a Laguna Blanca; Río Tres Pasos (MUELLER, 1909).

Navicula viridula var. linearis Hustedt

Figs. 110-111

Hustedt, F., Arch. Hydrobiol., Suppl., 15(2): 264, Lám. 19, fig. 1-2 (1937).

Valvas lineares con lados paralelos, a veces ligeramente convexos, y

extremos acuminado-rostrados. Areas axial y central como en la variedad

tipo. Estrías transapicales radiales en la parte media de la valva, conver-

gentes en los extremos, 8-9 en 10 um, claramente lineadas. Largo 65-70 um;

ancho 11-12 um.

Variedad de aguas dulces que según Hustedt (loc. cit.) se encuentra

en aguas con pH entre 5.5 y 8.

Fue encontrada en el Río Laraquete (“rara”) y en el Río Carampangue

(“común”). No había sido señalada anteriormente para Chile.

Navicula viridula var. rostellata (Kiitzing) Cleve

Fig. 109

Cleve, P.T., Sv. Vet-Akad. Hanadl., N.F., 27(3): 15 (1895).

Sinonimia: Navicula rostellata Kitzing, F.T., Bacill., p. 95, Lám. 3, fig. 65

(1844).

.”

Eje apical 39 um; transapical 9 um; estrías 12 en 10 um. Muy "rara

en el material, presente en el Río Carampangue.

Taxon de aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: Río Andalién; Río Bío-Bío; Arroyo Leone-

ra; Laguna Lo Méndez (RIVERA, 1974b). Desembocadura del Río Bío-Bío

(RIVERA 4 ARCOS, 1975). Mallin Chileno (KRASSKE, 1949).

Neidium bisulcatum var. baicalense (Skv. Sá Meyer) Reimer

Reimer, C., Proc. Acad. Nat. Sci. Phila., 111: 18, Lám. 2, fig. 2 (1959).

Taxon de ecología aún poco conocida. Eje apical 44-54 um; transapi-

cal 13-15 um; estrías 21-22 en 10 um; puncta 22 en 10 um. Los escasos frús-

tulos observados provienen de la muestra N* 10, una poza cercana al puen-

te en el Río Carampangue.

Distribución conocida para Chile: Río Andalién; Río Bío-Bío.

Nitzschia acicularis (Kiútzing) Wm. Smith

PIQx 92

Smib, Wi, yn. Brit. Diat., p. 43, Lám., 15, tig. 122 (1853).

En el material estudiado sus medidas fueron las siguientes: largo 60-80

um; ancho 34 um; fibulae 18-19 en 10 um. Según Schoeman (1973, p. 172)

las medidas límite de este taxon son: largo 30-150 um; ancho 2-4.5 um; fi-

bulae 16-22 en 10 um.

Presente en todas las muestras del Río Carampangue y en la poza

cercana a él (muestra N? 10), siempre en escasa cantidad.

Especie de aguas dulces, planctónica, propia de aguas alcalinas y eu-

tróficas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Nitzschia amphibia Grunow

Figs.:,.112-113

Grunow, A. in Cleve € Grunow, Sv. Vet.-Akad. Handl., 17(2): 98 (1880).

Valvas linear a linear-lanceoladas con extremos levemente producidos,

redondeados; 18-28 um de largo y 3-5 um de ancho. Rafe marginal. Fibulae

notorias, rectangulares, 8-9 en 10 um, las dos centrales levemente más se-

paradas. Estrías transapicales notorias, 17-20 en 10 um (generalmente 19),

paralelas en toda la valva o levemente curvadas en los extremos. En el

microscopio electrónico de transmisión los interespacios son de forma re-

dondeada o rectangulares (fig. 113). Las estrías están formadas de puncta

ovales, 28-30 en 10 um.

Taxon de aguas dulces con desarrollo óptimo a un pH 8.5. Fue encon-

trada en los Ríos Chivilingo y Laraquete, “rara”.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli a

2 kilómetros de Chorrillos, Calama; Trípoli del Salar de Ollagúe; Trípoli

del Salar de Atacama (FRENGUELLI, 1929). Calama, caliza lacustre (FREN-

GUELLI, 1938b). Lago Puyehue; Termas de Puyehue; Lago Rupanco; Cal-

buco; 5-8 kilómetros al norte de Calbuco; Río Puelo; Lago Risopatrón; Afluen-

te del Lago Risopatrón; Río Pascua; Cerca de Puyuhuapi (KRASSKE, 1939).

Tierra del Fuego (CLEVE-EULER, 1948). Lago O'Higgins; Lago General Ca-

rrera; Mallin Chileno; A 67 y a 100 kilómetros de Punta Arenas; San Isidro;

Cabo Troward; 4-5 kilómetros al S.W. de Bahía Inútil; Isla Dawson (KRASS-

KE, 1949).

Nitzschia apiculata (Gregory) Grunow

PRISMA

Grunow, A. in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet.-Akad. Handl., 17(2): 73 (1880).

Taxon de aguas dulces, tolerante a diferentes condiciones ecológicas.

Largo 33-38 um; ancho 5.5-7 um; estrías 15-16 en 10 um. Bastante “rara” en

muestras del Río Chivilingo y Laraquete.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Nitzschia dissipata (Kitzing) Grunow

Pia 33

Grunow, A. in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet.-Akad. Handl., 1712): 90 (1880).

Sinonimia: Nitzschia dissipata var. medía (Hantzsch) Grunow, A. in Van

Heurck, H., Syn. Diat. Belgique, p. 178 (1885).

Taxon de aguas dulces pero también encontrada en las salobres y las

marinas litorales. Largo 26-38 um; ancho 45.5 um; fibulae notorias 5-9 en

10 um, estrías no visibles en el microscopio fotónico, 32-50 en 10 um según

observaciones en el microscopio electrónico (Schoeman 4 Archibald, 1976).

La forma de la valva y de los extremos son bastante variables en este

taxon, los que en el material de los Ríos Laraquete y Carampangue varia-

ron entre linear a lanceoladas con extremos rostrados a capitados. Fue

“rara” en la mayoría de las muestras, salvo en la número 8 del Río Ca-

rampangue donde fue “común”.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo; Bahía de Concep-

ción; Isla Santa María; Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a). Río Bío-Bío;

Río Andalién ¡Arroyo Leonera; Laguna Lo Méndez (RIVERA, 1974b). De-

sembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975). Caleta Leandro,

Tumbes (RIVERA, 1975). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973).

Lago Puyehue; Termas de Puyehue; Lago Rupanco; Lago Llanquihue; Cal-

buco; Cerca de Puyuhuapi; Afluente del Lago Risopatrón; Río Pascua; Sur

de Chile (KRASSKE, 1939). Río Baguales y sus afluentes; Posa Kark (MUE-

LLER, 1909). Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Nitzschia ignorata Krasske

Fig. 34

Krasske, G. in Hustedt, F., Sússw. Flora Mitteleuropas, 10: 422, fig. 819 (1930).

En vista conectival los frústulos son lineares con extremos sigmoides.

Valvas linear a linear-lanceoladas, sigmoides, adelgazándose hacia los ex-

tremos que son a veces suavemente producidos, redondeados. Rafe excén-

trica. Fibulae notorias, las dos centrales más separadas, 7-11 en 10 um.

Estrías transapicales muy finas y difíciles de ver, 35-36 en 10 um. Largo

45-83 um; ancho 4-5 um.

Taxón de aguas dulces encontrado exclusivamente, y en escasa can-

tidad, en el Río Carampangue. No había sido señalado anteriormente para

Chile.

Nitzschia parvula Lewis

Figs. 35-36

Lewis, F. in A.S.A., Lám. 386, fig..MI2A19r(1874:.09)

Largo 28-43 um; ancho 4-6 um; fibulae 5-9 en 10 um, estrías difícilmen-

te visibles en preparaciones montadas con Hyrax, 30-31 en 10 um. Fue en-

contrada en los Ríos Chivilingo y Laraquete, siempre en escasa cantidad.

Taxon de aguas dulces y salobres, generalmente presente en las de-

sembocaduras de ríos, cosmopolita.

Distribución conocida para Chile: Laguna Chica de San Pedro; Laguna La

Laja (RIVERA, 1970). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Río

Tubul (RIVERA, 1974a). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS,

1975). Corral; Calbuco; Afluente del Lago Risopatrón; Río Pascua (KRASS-

KE, 1989).

Nitzschia pseudoseriata Hasle

Figs. 115-117

Hasle, G., Skrift. det Norske Videnskaps-Akad., Mat. Naturv. Kl., 18: 11, Lám.

4, fig. 3-4; Lám. 5; fig. 1-6; Lám. 6, fig. 1 (1965).

Sinonimia: Pseudonitzschia seriata (Cl.) Peragallo in Helmcke « Krieger,

II, p. 16, Pl. 186; (1954); IV, p. 37, Pl. 405 (1963).

Especie marina de aguas tibias a templadas, se la encuentra solamen-

te en el hemisferio sur. Eje apical 97-110 um; transapical 7.5-9.0 um; estrías

y fibulae 14-16 en 10 um.

Presente en los Ríos Chivilingo y Laraquete, “rara” en muestras 1, 3,

4 y 7, y “común” en las muestras 5 y 6.

Nitzschia pseudoseriata es aparentemente un componente regular del

plancton de la costa chilena, en el que se encuentra durante todo el año.

Esta especie pertenece al “Complejo Nitzschia seriata” del cual Nitzschia

seriata ha sido señalada ampliamente para Chile por diversos autores, desde

Arica a Cabo de Hornos (Avaria, 1965, 1970, 1971; Meyer, 1966, 1970; Hen-

dey, 1937; Rivera, 1969; Montecino 4 Lopenhandia, 1972; Guzmán 4 Cam-

podónico, 1972; Campodónico et al., 1975; Lembeye, 1975; Parra et al., 1977).

Hasle (1965 y 1972), ha demostrado que la distribución de Nitzschia se-

ríata está restringida a la parte norte del Hemisferio Norte (boreal), y que

por lo tanto las citas de este taxón para otros lugares se han debido a

confusión con otras especies del "Complejo Nitzschia seriata” (N. frau-

dulenta; N. pungens; N. subpacífica; N. heimú y N. pseudoseriata), y

muy especialmente con esta última.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Dichato; Puyuhuapi (KRASS-

KE, 1941); Calbuco (KRASSKE, 1939 y 1941; HASLE, 1965); Dalcahue; Que-

talca; San Vicente (HASLE, 1965 y 1972).

Nitzschia pungens Grunow emend. Hasle

Figs. 118-120

Grunow, A. in Cleve 6 Moller, N* 307 (1882). Hasle, G., Skrift. det Norske

Videnskaps-Akad., Mat. Naturv. Kl., 18: 12-14, Lám. 1, fig. 45; Lám. 5, fig.

7-9; Lám. 6, fig. 3; Lám. 7, fig. 1-8 (1965).

Células unidas en cadenas por superposición de sus extremos, la cual

puede ser de hasta 1/3 del largo total de las células. Valvas fuertemente

silificadas, linear a linear-llanceoladas, con extremos agudos; 100-140 um de

largo y 3.2-4.5 um de ancho en el material analizado. Rafe excéntrica. Fi-

bulae y costillas transapicales en igual número, 11-13 en 10 um, a veces

un poco desplazadas las unas de las otras; fibulae centrales no más sepa-

radas que las restantes. La membrana intercostal es perforada por dos

filas de poroides, visibles también en preparaciones montadas en Hyrax y

en número de 3-4 en 1 um (fig. 118). Taxón bastante característico por sus

largas y angostas valvas con extremos agudos y distinguible de N. pungt-

formis Hasle (1971) por la ausencia de pseudonódulo.

Es una especie propia de las aguas costeras de ambos hemisferios.

Fue encontrada en la desembocadura de los Ríos Chivilingo y Laraquete,

“común” en las muestras de marzo y abril de 1977. Ha sido escasamente

señalada para Chile y, en mi opinión, confundida con otras especies del

complejo Nitzschia seriata.

Distribución conocida para Chile: entre los 18? y los 405 (HASLE, 1972).

Bahía de Valparaíso (ZACHARIAS, 1906; MEYER, 1970; AVARIA, 1971). Ba-

hía de San Vicente (HASLE, 1965).

Nitzschia sigma (Kútzing) Wm. Smith

Fig. .37

Smith, Wm., Syn. Brit. Diat., 1: 39, Lám. 13, fig. 108 (1853).

Largo 78-243 um; ancho 6.0-11 um; fibulae 8-10 en 10 um; estrías transa-

picales 28-30 en 10 um. Fue encontrada “común” en una muestra del Río

Chivilingo y “rara” en otra del Río Laraquete.

Especie cosmopolita, en aguas salobres principalmente pero según Chol-

noky (1970) también se la encuentra en las aguas dulces.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 a.

Opephora martyi Heribaud

FiiaP21

Heribaud, J., Diat. d'Auvergne, 1: 43, Lám. 8, fig. 20 (1902).

Es característico de ella la forma aovada-lanceolada de sus valvas y

su presencia en las aguas dulces. El número de estrías fue de 6-10 en 10

um en el material analizado, algo superior al senalado en la literatura

(4.5-8 en 10 um). Largo 11-24 um; ancho 3.5-5.5 um. Fue encontrada en los

Ríos Chivilingo y Laraquete (muestras 1 y 3), en ambos casos con una abun-

dancia relativa de “común”.

Taxon de aguas dulces, lagos y ríos, no desarrollándose en las aguas

salobres.

Distribución conocida para Chile: Calama, caliza lacustre (FRENGUELLI,

1938b). Río Andalién (RIVERA, 1974b). Desembocadura del Río Bío-Bío (RlI-

VERA 6 ARCOS, 1975). Lago Rupanco; Lago Llanquihue; Calbuco; Lago

Risopatrón; Río Pascua (KRASSKE, 1939).

Pinnularia borealis Ehrenberg

PIgs: “229123

Ehrenberg, C.G., Abh. Kónigl. Akad. WWiss. Berlin, 1841, p. 420, Lám. 1(2),

fig. 6; Lám. 4(1), fig. 5; Lám. 4(5), fig. 4 (1843).

Sinonimia: Navicula borealis Kútzing, F.T., Bacill., p. 96, Lám. 28, fig. 68,

72c (1844).

Largo 34-41 um; ancho 8-10 um; alvéolos 5-6 en 10 um. Muy escasa en

el material estudiado, encontrada sólo en la muestra 9 del Río Carampan-

gue. “Rara”.

Taxón de aguas dulces, común en ríos y lagunas.

Distribución conocida para Chile: Calama, caliza lacustre (FRENGUELLI,

1938b). Bahía de Valparaíso (KUETZING, 1844; GAY, 1854). Bahía de Con-

cepción (RIVERA, 1969). Río Andalién; Río Bío-Bío; Arroyo Leonera; Laguna

La Posada (RIVERA, 1974b). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA á

ARCOS, 1975). Termas de Puyehue; Lago Llanquihue; Calbuco; 5-8 kilóme-

tros al norte de Calbuco; Puyuhuapi; Afluente del Lago Risopatrón; Río

Pascua; Río Puelo; Lago Risopatrón; Bosque de lluvias del sur de Chile

(KRASSKE, 1939). Trípoli en Isla Cailín frente a Quellón, Chiloé (FRENGUE-

LLI, 1935). Tierra del Fuego (CLEVE-EULER, 1948). Posa Kark, Patagonia

(MUELLER, 1909). Río Grande; Río Cullén (CLEVE, 1900). Lago Lynch; Lago

General Carrera; Río Rubens; A 10 kilómetros de Río Rubens; Río Alerce;

Monte Tronador; Mallin Chileno; A 67 y a 100 kilómetros de Punta Arenas;

Isla Dawson; 4-5 kilómetros al S.W. de Bahía Inútil (KRASSKE, 1949). Ba-

hía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Pinnularia brevicostata var. intermedia f cuneata Rivera

Rivera, P., Gayana, Bot., 28: 55, fig. 82 (1974b).

Esta forma, descrita por Rivera (loc. cit.) para la Laguna Pineda, fue

encontrada ahora algunos kilómetros más al sur, en el Río Laraquete. Rara”.

Taxón característico por sus extremos valvares cuneado-rostrados. Largo

52 um; ancho 8 um; alvéolos 9-10 en 10 um.

Taxón de aguas dulces, en general de ecología aún poco conocida.

Había sido señalada solamente para la localidad tipo.

Pinnularia divergens Wm. Smith

Sato, Win, ya. Bat. Diat., 1: 57, Lám. 18, fig*"177 (18337

Sinonimia: Navicula divergens Ralfs in Pritchard, A., Infus., p. 896 (1861).

Largo 62-79 um; ancho 10-12 um; alvéolos 10-11 en 10 um. Fue encon-

trada en los Ríos Chivilingo y Carampangue, siemp:e en escasa cantidad.

Variedad de aguas dulces, cosmopolita, con mejor desarrollo en las

aguas ácidas.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA en RIVERA et al., 1973.

Citas adicionales: Trípoli de Calama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1930). Río

Pudeto (RIVERA, 1974 a). Río Cullen (CLEVE, 1900). Bahía Orange, Cabo

de Hornos (PETIT, 1889).

Pinnularia intermedia var. hybrida (Cleve-Euler) Cleve-Euler

Fig!" 38

Cleve-Euler., A., Sv. Vet.-Akad. Handl., 5(4): 31, fig. 1036 h,i (1955).

Valvas lineares con lados cóncavos en la parte media y con extremos

algo ensanchados, 17-19 um de largo y 5-6 um de ancho. Area axial angos-

ta, linear. Fascia ensanchándose hacia los márgenes de la valva, los cuales

alcanza. Alvéolos fuertemente radiales en el centro y convergentes hacia

los extremos, 11-12 en 10 um. Difiere de la variedad tipo principalmente por

la forma ensanchada de los extremos valvares.

Bastante escasa en el material analizado, presente sólo en una muestra

del Río Laraquete. No había sido señalada anteriormente para Chile.

Pinnularia latevittata + medioconstricta (Font.) Cleve-Euler

Figs 124

Cleve-Euler, A., Sv. Vet-Akad. Handl., 5(4): 73, fig. 1101 c (1955).

Taxón de aguas dulces; largo 218 um; ancho 35 um; alvéolos 5 en 10

um. Se caracteriza por el estrechamiento de la valva en su parte media.

Fue encontrada sólo en la muestra 9 del Río Carampangue, “rara”.

Distribución conocida para Chile: se la conocía solamente para la Laguna

Chica de San Pedro (RIVERA, 1970; PARRA et al., 1976).

Pinnularia major (Kitzing) Rabenhorst

Prol 112

Rabenhorst, L., Siisssw. Diat., p. 42, Lám. 6, fig. 5; Lám. 10 supl., fig. 4 (1853).

Sinonimia: Navicula major (Kútzing) Kitzing, F.T., Bacill., p. 97, Lám. 4,

fig. 1920 (1844).

Valvas lineares, 145-160 um de largo y 18-20 um de ancho, ensancha-

das en su parte media y con extremos redondeados. Area axial aproxima-

damente 1/4 del ancho de la valva; área central algo asimétrica y sólo

levemente más ensanchada que el área axial. Alvéolos radiales en la parte

media y convergentes en los extremos, 7-8 en 10 um. Se caracteriza por

la forma de la valva y por el ancho del área axial, al cual según la lite-

ratura puede ser de 1/4 a 1/5 del ancho de la valva.

Taxon de aguas dulces especialmente en aquellas con bajo contenido

mineral. Fue encontrada exclusivamente en la muestra N* 9 del Río Ca:am-

pangue, 'rara”.

Distribución conocida para Chile: Trípoli de Arica (FRENGUELLI, 1938). Loa-

Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli de Calama, Antofagasta (FRENGUELLI,

1930). Provincia de Santiago (ESPINOSA, 1923). Corral; Termas de Puyehue;

Lago Llanquihue; Pelluco, Puerto Montt; Calbuco; 5-8 kilómetros al norte de

Calbuco; Provincia de Aysén al interior del fiordo de Puyuhuapi; Cerca de

Puyuhuapi; 40 kilómetros al norte del Puerto de Puyuhuapi; Lago Risopatrón;

Río Pascua; Río Puelo; Isla Puluqui; Bosque de lluvias del sur de Chile

(KRASSKE, 1939). Trípoli en Puyehue, Osorno; Trípoli en Isla Cailín frente

a Quellón, Chiloé (FRENGUELLI, 1935). Tierra del Fuego (CLEVE-EULER,

1948). Posa Chico en Patagonia (MUELLER, 1909). Monte Tronador; Río Aler-

ce; Río Rubens; A 10 kilómetros de Río Rubens; Lago O'Higgins; Lago Ge-

neral Carrera; Lago Lynch; A 67 y a 100 kilómetros de Punta Arenas; San

Francisco al norte de Punta Arenas; Isla Dawson; San Isidro, Cabo Troward;

4-5 kilómetros al S.W. de Bahía Inútil; Mallin Chileno (KRASSKE, 1949). Ba-

hía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Pinnularia viridis (Nitzsch) Ehrenberg

Fig. 126

Ehrenberg, C.G., Abh. Kónigl. Akad. Wiss. Berlin, 1841, p. 305, 385, Lám.

1(1), fig. 7; Lám. 1(3), fig. 3; Lám. 1(4), fig. 3; Lám. 2(1), fig. 22; Lám. 2(3).

fig. 1; Lám. 2(5), fig. 2; Lám. 2(6), fig. 21; Lám. 3(1), fig. 1-2 (1843).

Sinonimia: Navicula viridis (Nitzsch) Ehrenberg, C.G., Infus., p. 182, Lám.

13, fig. 16; Lám. 21, fig. 12 (1838).

Fue encontrado sólo en una muestra del Río Chivilingo, en escasa

cantidad y con frústulos de reducido tamaño; largo 50-54 um, ancho 12-14

um, alvéolos 7-10 en 10 um.

Taxón de aguas dulces que, según Cholnoky (1968), tiene un óptimo

desarrollo en aguas con pH 5.6-6.0.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Loa - Atacama (HUSTEDT, 1927).

Pleurosigna intermedum Wxm. Smith

Smith, Wm., Syn. Brit, Diat., p. 64, Lám. 21, fig. 200 (1853).

Sinonimia: Pleurosigma nubecula Wm. Smith, Syn. Brit. Diat., p. 64, Lám.

21, fig. 201 (1853).

Largo 220 um; ancho 21 um; estrías transversales y oblicuas en igual

número, 22 en 10 um.

Taxón de aguas salobres y marinas, encontrada ahora exclusivamen-

te en la desembocadura del Río Laraquete, “rara”.

Distribución conocida para Chile: Entre Ramuncho y Talcahuano (KRASS-

KE, 1939). Bahía de Concepción (RIVERA, 1969). Estero Lenga (RIVERA,

1974a). Bahía Orange, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Pleurosigma salinarum Grunow

Figs. 127-128

Grunow, A., in Cleve 4 Grunow, Sv. Vet-Akad. Handl., N.F., 17(2): 54 (1880).

Valvas lanceoladas, levemente sigmoides, con extremos algo produci-

dos, redondeados; 60-120 um de largo y 12-17 um de ancho. Area axial an-

gosta, junto con la rafe son algo sigmoides y un poco excéntricas hacia los

extremos. Área central un tanto alargada. Estrías transversales 24-25 en

10 um, algo más notorias que las diagonales, 28-29 en 10 um.

Taxon de aguas salobres. Fue encontrado en el Río Chivilingo y Río

Laraquete, nunca en gran cantidad. No había sido señalada anteriormente

para Chile.

Rhabdonema arcuatum (Lyngbye) Kiútzing

Kiitzing, F.T., Bacill., p. 126, Lám. 18, fig. 6 (1844).

Especie marina, epífita, muy repartida a lo largo de la costa chilena.

Fue encontrada exclusivamente en la desembocadura del Río Laraquete,

rara”.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Coquimbo; Isla Santa María;

Río Tubul; Río Quenuir; Río Pudeto; Golfo de Quetalmahue (RIVERA, 1974a).

Bahía de Concepción (RIVERA, 1969 y 1974a). Estero Lenga (RIVERA en

RIVERA et al., 1973: RIVERA, 1974a). Canal El Morro Talcahuono (PARRA

et al., 1978). Bahía de Dichato; Golfo de Dalcahue (KRASSKE, 1941). Calbu-

co (KRASSKE, 1939 y 1941). Río Cullén (CLEVE, 1900).

Rhizosolenia hebetata í semispina (Hensen) Gran

Gran, H.H., Diat. Arkt. Meere, 3: 524, Lám. 17, fig. 11-12 (1904).

Sinonimia: Rhizosolenia styliformis var. longispina Hustedt, F. in A.S.A.,

L4m.316, 675-2112 (1914).

Taxon cosmopolita, oceánico, prefiriendo las aguas templadas. En nues-

tro país ha sido encontrado siempre en escasa cantidad y generalmente

durante el verano. Hasle (1975, p. 105-107) da un excelente análisis de este

taxon realizado en base a microscopía electrónica.

En el presente análisis fue encontrada sólo en la desembocadura del

Río Laraquete, “rara”.

Distribución conocida para Chile: Trípolis de Tiltil y Mejillones (FRENGUE-

LLI, 1949). Bahía de Valparaíso (AVARIA, 1965 y 1971). 20*39'5, 70*20"W;

Bahía de Janin; Golfo de Arauco; Seno de Reloncaví; Golfo de Ancud; Golfo

de Dalcahue (KRASSKE, 1941). Isla Quinchao (AVARIA, 1970). Puerto Edén

(GUZMAN Y CAMPODONICO, 1972). Paso de Drake (FRENGUELLI € OR-

LANDO, 1958).

Rhoicosphenia curvata (Kiútz.) Grunow ex Rabenhorst

Fig. 39

Rabenhorst, L., Fl. Europaea Alg., p. 112, 342 (1864).

Largo 31-35 um; estrías 13-14 en 10 um al centro, más numerosas (18-20)

en los extremos. Fue encontrada en los Ríos Laraquete y Carampangue,

siempre en escasa cantidad. Taxón de aguas dulces y salobres, epífita.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 6 ARCOS, 1975).

Río Grande (CLEVE, 1900).

Rhopalodia gibba (Ehrenberg) O. Miller

Miller, O., Engler Bot. Jahrb., 22: 65, Lám. 1, fig. 15-17 (1897).

Sinonimia: Epithemia gibba Kitzing, F.T., Bacill., p. 35, Lám. 4, fig. 22

(1844).

Largo 82-138 um; ancho 9-12 um, costillas 6-7 en 10 um; estrías 14-16

en 10 um.

Especie cosmopolita, oligohalobia, generalmente en aguas estancadas.

Bastante común en el Río Laraquete y en el Carampangue, pero siempre en

escasa cantidad.

Distribución conocida para Chile: Trípoli en Arica (FRENGUELLI, 1938). Loa-

Atacama (HUSTEDT, 1927). Trípoli a 2 kilómetros de Chorrillos, Calama

(FRENGUELLI, 1929). Trípoli de Calama, Antofagasta (FRENGUELLI, 1930).

Calama, caliza lacustre (FRENGUELLI, 1938b). Provincia de Santiago (ESPI-

NOSA, 1923). Laguna Chica de San Pedro; Laguna La Laja (RIVERA, 1970).

Calle en San Vicente; Ramuncho; Lago Puyehue; Lago Rupanco; Calbuco;

Puyuhuapi; Cerca de Puyuhuapi; Lago Risopatrón; Río Pascua; Bosque de

lluvias del sur de Chile (KRASSKE, 1939). Trípoli Isla de Chiloé (FRENGUE-

LLI, 1930). Trípoli en Isla Cailín, frente a Quellón, Chiloé (FRENGUELLI,

1935). Lago Llanquihue (KRASSKE, 1939; THOMASSON, 1963). Posa Kark;

Arroyo Toro; Posa Chico; Arroyo junto a Laguna Blanca; Río Tres Pasos

(MUELLER, 1909). Lago General Carrera; Isla Dawson; San Isidro, Cabo

Troward; Mallin Chileno (KRASSKE, 1949). Río Grande (CLEVE, 1900). Río

Tres Puentes (FRENGUELLI, 1923).

Rhopalodia gibba var. ventricosa (Kiitzing) Perag. 4 Perag.

Peragallo 4 Peragallo, Diat. Mar. France, p. 302, Lám. 77, fig. 3-5 (1900).

Sinonimia: Epithemia gibba var. ventricosa (Kiútzing) Grunow in Van

Heurck, H., Syn Diat. Belgique, Lám. 32, fig. 4-5 (1881).

Largo 42-55 um; ancho de la valva 8-11 um; costillas 7-8 en 10 um;

estrías 14-16 en 10 um. Fue encontrada en los Ríos Chivilingo, Laraquete y

Carampoangue, “rara”. Taxón de aguas dulces de ecología similar a la va-

riedad tipo y posiblemente un sinónimo de ella pues corrientemente se en-

cuentran formas de transición entre ambos taxa.

Distribución conocida para Chile: Trípoli a 2 kilómetros de Chorrillos, Cala-

ma (FRENGUELLI, 1929). Trípoli de Calama, Antofagasta (FRENGUELLI,

1930). Trípoli de San Pedro de Atacama (FRENGUELLI, 1934). Río Andalién;

Río Bío-Bío; Laguna Pineda; Arroyo Leonera (RIVERA, 1974b). Desemboca-

dura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975). Lago Rupanco (KRASSKE,

1939). Río Tres Puentes, Punta Arenas (FRENGUELLI, 1923).

Rhopalodia musculus (Kiútzing) O. Miller

Miiller, O., Hedwigia, 38: 278 (1899).

Especie de aguas salobres, encontrada en los Ríos Laraquete y Ca-

rampangue, siempre en escasa cantidad.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Skeletonema costatum (Grev.) Cleve

Cleve, P.T., Sv. Vet-Akad. Hanal., 5(8): 18 (1878).

Especie marina, cosmopolita, se encuentra comúnmente en gran can-

tidad en las aguas costeras y sólo ocasionalmente ha sido encontrada en

aguas oceánicas. Hasle (1973) ha estudiado la especie proveniente de di-

ferentes zonas del Atlántico y del Pacífico.

Fue encontrada en las desembocaduras de los Ríos Chivilingo y Lara-

quete, en la mayoría de las muestras allí recolectadas, pero siempre en es-

casa cantidad.

Distribución conocida para Chile: Ha sido señalada a lo largo de casi toda

la costa chilena, desde Bahía Janin (KRASSKE, 1941) hasta el Paso de Drake

(MEYER, 1966).

Stauroneis araucana Rivera

Rivera, P., Cienc. y Tec. del Mar, CONA, 1978. (EN PRENSA).

Taxón de ecología aún poco conocida, probablemente propia de aguas

salobres. Fue descrita por Rivera (loc. cit.) para el área ahora estudiada y

a partir del mismo material. Largo 24-38 um; ancho 6.5-10 um; estrías 24-28

en 10 um en toda la valva; puncta circulares, 39-40 en 10 um.

Distribución conocida para Chile: Río Laraquete, Río Chivilingo (RIVERA,

loe vert”).

Stephanopyxis palmeriana (Grev.) Grunow

Grunow, A., Denkschr. Akad. Wiss. Wien, Math. Nat. Kl., 48: 90 (1884).

Diámetro de las células: 30-65 um. Especie marina, nerítica, con mejor

desarrollo en las aguas temperadas, cosmopolita. Fue encontrada solamen-

te en la desembocadura del Río Laraquete y en escasa cantidad.

Distribución conocida para Chile: ha sido señalada solamente para la Ba-

hía de Concepción (RIVERA, 1969), pero recientemente la he encontrado

también en la Bahía de San Vicente.

Surirella guatimalensis Ehrenberg

Pig. 42

Ehrenberg, C.G., Mikrogeol., Lám. 33, fig. 7 (1854).

Sinonimia: Surirella cardinalis Kitton, F., Hardwicke's Science Gossip, 4:

132 (1868).

Un solo frústulo fue encontrado en el material del Río Carampangue.

Largo 182 um; ancho 78 um; canales 3 en 10 um. Taxón endémico de Amé-

rica que se encuentra en las aguas dulces de poca corriente, en zonas de

pantanos.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Lago Lanalhue (THOMASSON, 1963). Puerto Montt (SCH-

MITH in A.S.A., 1885). Tierra del Fuego (CLEVE, 1948). Río Grande (CLEVE,

1900).

Surirella ovata var. smithii Cleve-Euler

Figs. 129-130

Cleve-Euler, A., Sv. Vet.-Akad. Handl., 3(3): 123, fig. 1566 m (1952).

Variedad de aguas dulces que ha sido muy poco señalada para Chile.

Fue encontrada ahora en los Ríos Laraquete y Carampangue pero nunca

en gran cantidad. Largo 25-35 um; ancho 7-7.5 um; canales 7-8 en 10 um.

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 6 ARCOS, 1975).

Surirella splendida (Ehrenberg) Kitzing

Kútzing, F.T., Bacill., p. 62, Lám. 7, fig. 9 (1844).

Sinonimia: Surtrella robusta var. splendida (Ehr.) Van Heurck, H., Syn.

Diat. Belgique, p. 187 (1881).

Largo 147-160 um; ancho 38-45 um; 15-20 canales en 100 um. Fue en-

contrada con abundancia relativa de “rara” en los Ríos Laraquete y Ca-

rampangue, mostrando una cierta variación en el contorno valvar. Taxón

de aguas dulces y salobres con un pH óptimo alrededor de 6.0 (Cholnoky,

1968).

Distribución conocida para Chile: Trípoli de San Pedro de Atacama, Anto-

fagasta (FRENGUELLI, 1934). Laguna Chica de San Pedro (RIVERA, 1970;

PARRA et al., 1976). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Río

Bío-Bío; Laguna Pineda; Arroyo Leonera (RIVERA, 1974b). Laguna La Po-

sada (PARRA et al., 1976). Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA «€ AR-

COS, 1975). Calbuco; 40 kilómetros al norte del Puerto de Puyuhuapi; Pro-

vincia de Aysén al interior del fiordo de Puyuhuapi (KRASSKE, 1939). Mallin

chileno (KRASSKE, 1949). Posa Chico; Arroyo junto a Laguna Blanca, Pa-

tagonia (MUELLER, 1909).

Surirella striatula Turpin

Turpin, P.J.F., Mem. Mus. Hist, Nat., 16: 361, Em: 15, fia: "1-7 (1829),

Largo 78 um; ancho 54 um; canales 1-2 en 10 um, estrías 20-23 en 10 um.

Especie marina y de aguas salobres, muy "rara” en el material anali-

zado pues una sola valva fue encontrada en la muestra N* 6 del Río Lara:

qguete.

Distribución conocida para Chile: Bahía de Concepción (RIVERA, 1969).

Canal El Morro, Talcahuano (PARRA et al., 1978). San Francisco al norte

de Punta Arenas (KRASSKE, 1949).

Synedra fasciculata (Ag.) Kitzing

Figs: 1824133

Kitzing, F.T., Bacill., p. 68 (1844).

Sinonimia: Synedra arcus Kiútzing, F.T., Bacill., p. 68, Lám. 30, fig. 50

(1844).

Synedra affinis Kútzing, F.T., Bacill., p. 68, Lám. 15, fig. 6-11;

L4m. 24(1), fig. 5 (1844):

Synedra tabulata (Ag.) Kútzing, F.T., Bacill., p. 68, Lám. 15

(10), fig. 1-3 (1844).

Taxón de aguas dulces y salobres, cosmopolita, ya encontrada en gran

cantidad sobre Gracilaria verrucosa (“pelillo”) en la zona central y sur

del país. Largo 87-159 um; ancho 5-8 um; estrías 11-13 en 10 um. “Rara” en

muestras de los Ríos Chivilingo y Laraquete.

Distribución conocida para Chile: Loa-Atacama (HUSTEDT, 1927). Valparaíso

(KUETZING, 1844; GAY, 1854). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al;

1973; RIVERA, 1974a). Bahía de Dichato (KRASSKE, 1941; RIVERA, 1974a).

Isla Santa María; Río Tubul; Río Quenuir; Río Pudeto; Golfo de Quetal

mahue (RIVERA, 1974a). Entre Ramuncho y Talcahuano; Isla Llancahue

(KRASSKE, 1939). Calbuco; Puyuhuapi (KRASSKE, 1939 y 1941). Bahía Oran-

ge, Cabo de Hornos (PETIT, 1889).

Synedra rumpens var. familiaris (Kútzing) Hustedt

Figs. 40-41, 131

Hustedt, F., Siússw. Flora Mitteleuropas, 10(2): 156, fig. 176 (1930).

Sinonimia: Synedra familiaris Kiitzing, F.T., Bacill., p. 68, Lám. 15, fig. 12

(1844).

Este taxón es un ejemplo más de la necesidad de efectuar una revisión

de los géneros Fragilaria y Synedra, los cuales se mantienen separados

básicamente por el modo de desarrollo de sus especies.

Hustedt crea en 1957 (p. 229) la combinación Fragilaria familiaris en

base a la Synedra familiaris de Kiitzing. Este taxón es muy difícil de di-

ferenciar, especialmente al observar frústulos aislados, de la S. rumpens

Kitzing y solamente las colonias planctónicas en forma de cintas de la pri-

mera son distinguibles de las colonias estrelladas y sésiles de la segunda.

El número de estrías en ambos taxa no es tampoco un carácter diferencia-

ble de gran valor, pues la F. familiaris tiene aproximadamente 16 estrías

en 10 um y la S. rumpens 19-20 en 10 um, pero es común encontrar formas

con 17-18 estrías. En el material del presente estudio hemos encontrado

valvas con 16, 17, 18 y 19 estrías en 10 um, y que por sus características,

son un verdadero nexo entre ambas especies.

Una revisión de los taxa de Fragilaria y Synedra seguramente reu-

nirá a ambas especies en una sola, pero por el momento y a la espera de

dicho estudio, seguiré considerándola como una variedad de la S. rumpens

Distribución conocida para Chile: Lago Laja; Laguna Chica de San Pedro

(RIVERA, 1970). Estero Lenga (RIVERA en RIVERA et al., 1973). Lago Pu-

yehue; Lago Llanquihue (KRASSKE, 1939). Trípoli en Isa Cailín frente a

Quellón, Chiloé (FRENGUELLI, 1935). San Isidro, Cabo Troward (KRASSKE,

1949).

Synedra ulna (Nitzsch) Ehrenberg

Ehrenberg, C.G., Ber. Akad. Wiss. Berlin, p. 53 (1836).

Taxón de aguas dulces de amplia distribución mundial, según Cholnoky

(1968) con un desarrollo óptimo a pH 7.8. Varios autores (Cholnoky, 1962;

Schoeman, 1973, etc.) consideran a las variedades de este taxón como si-

nónimos de la variedad tipo. (

Fue encontrada en los Ríos Laraquete (“rara”) y Carampangue (“rara”

y común”).

Distribución conocida para Chile: vea RIVERA 1974 b.

Citas adicionales: Loa-Atacama (HUSTEDT 1927), Calama caliza lacustre

(FRENGUELLI, 1938b). Concepción y alrededores (PARRA et al., 1974).

Desembocadura del Río Bío-Bío (RIVERA 4 ARCOS, 1975).

Thalassiosira mendiolana Hasle 4 Heimdal

Figs. 134-135

Hasle, G. 4 B. Heimdal, Beih. Nova Hedwigia 31: 570, figs. 44-53, 73-74 (1970).

Th. mendiolana es una especie descrita por Hasle 4 Heimdal (loc. cit.)

para las aguas costeras de Chile y Perú donde aparentemente es un com-

ponente regular del plancton. Ha sido confundida con Th. aestivalis Gran

et Angst con la cual tiene cierta similaridad, pero características como el

número de aréolas y apículas marginales la separan de ella. Es también

cercana a Th. eccentrica (Ehr.) Cleve por presentar un proceso labiado,

túbulos distribuidos en la superficie valvar y más de una corrida de túbulos

marginales. El asunto se complica aún más pues, teniendo Th. mendiolana

una ornamentación fasciculada sobre sus valvas, algunas veces presenta

un tipo de areolación excéntrica mezclada con una fasciculada. Una exce-

lente discusión al respecto y diferenciación entre ambas especies la de

Fryxell y Hasle al estudiar a Th. eccentrica (1972, p. 308). Los especímenes

por nosotros encontrados presentaron un diámetro valvar de 33-38 um; 11

a 12 areolas en 10 um y 6 a 7 túbulos marginales en 10 um. Th. mendiolana

estuvo presente como “rara” en el Río Laraquete, muestras 5, 6 y 7.

Distribución conocida para Chile: Valparaíso; Dalcahue (HASLE 4 HEIM-

DAL, 1970).

Figs. 5-6. Achnanthes affinis Grunow. Fig. 5: valva con pseudorafe. Fig. 6: valva con

rafe. Figs. 7-8. Achnanthes exigua Grunow. Fig. 7: valva con rafe. Fig. 8: valva con

pseudorafe. Fig. 9. Cyclotella meneghiniana Kitzing. Fig. 10. Cymbella minuta Hilse.

Figs. 11-12. Cymbella pusilla Grunow. Fig. 13. Cymbella naviculiformis Auerswala,

Fig. 14. Cymbella sinuata Gregory. Fig. 15. Amphipleura lindheimeri var. neotropica

Frenguelli. Fig. 16. Asterionella formosa Hassall. Fig. 17. Bacteriastrum sp.

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Fig. 18. Denticula subtilis Grunow. Fig. 19. Eunotia tenella (Grunow) Hustedt. Figs. 20-

22. Fragilaria vaucheriae (Kútz.) Petersen. Variación del contorno valvar. Fig. 23.

Licmophora abbreviata Agardh. Fig. 24. Licmophora juerguensii Agardh. Fig. 25.

Melosira granulata var. angustissima Múller. Fig. 26. Navicula gottlandica Grunow.

Fig. 27. Navicula cryptocephala Kútzing var. cryptocephala. Figs. 28-29. Navicula la-

teropunctata Wallace. Fig. 30. Navicula pupula var. rectangularis (Greg.) Grunow.

Fig. 31. Navicula pseudoreinhardti Patrick.

Fig. 32. Nitzschia acicularis (Kiitzing) Wm. Smith. Fig. 33. Nitzschia dissipata (Kútzing)

Grunow. Fig. 34. Nitzschia ignorata Krasske. Figs. 35-36. Nitzschia parvula Lewis.

Fig. 37. Nitzschia sigma (Kútzing) Wm. Smith. Fig. 38. Pinnularia intermedia var.

hybrida (Cleve-Euler) Cleve-Euler. Fig. 39. Rhoicosphenia curvata (Kitzing) Grunow

ex Rabenhorst. Figs. 40-41. Synedra rumpens var. familiaris (Kitzing) Hustedt. Varia-

ción del contorno valvar y del número de estrías. Fig. 42. Surirella guatimalensis

Ehrenberg.

Figs. 43-44. Achnanthes affinis Grunow. Fotomicrografías obtenidas con el microscopio

electrónico de transmisión. Fig. 43: valva con pseudorafe. Fig. 44: valva con rate.

Figs. 45-46. Achnanthes hauckiana var. rostrata Schulz. Contraste de fase. Fig. 45: valva

con pseudorafe. Fig. 46: valva con rafe. Figs. 47-50. Achnanthes lanceolata var. dubia

Grunow. Figs. 47-49: variación del contorno valvar. Contraste de fase. Fig. 50: foto-

micrografía obtenida con el microscopio electrónico de transmisión. Fig. 51. Achnanthes

pinnata Hustedt. Contraste de fase. Fig. 52. Achnanthes temperez M. Peragallo. Contras-

te de fase. Fig. 53. Actinoptychus senarius (Ehr.) Ehrenberg. Contraste de fase.

Figs. 5455. Actinocyclus curvatulus Janisch. Contraste de fase.

Fig. 56. Actinocyclus subtilis (Greg.) Ralfs. Contraste de fase. Figs. 57-58. Bacillaria

paxillifer (O. Múller) Hendey. Contraste de fase. Fig. 59. Amphipleura lindheimeri

var. neotropica Frenguelli. Contraste de fase. Extremo: estrías transversales y longitu-

dinales. Fig. 60. Caloneis westiúi (Wm. Smith) Hendey. Contraste de fase. Fig. 61. Ce-

ratoneis arcus (Ehr.) Kútzing. Contraste de fase.

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Figs. 62-63. Ceratoneis arcus var. amphioxys (Rabh.) Brun. Contraste de fase. Varia-

ción del contorno valvar. Figs. 64-65. Cocconeis californica var. lengana Rivera. Contras-

te de fase. Fig. 64: valva con rafe. Fig. 65: valva con pseudorafe. Figs. 66-67. Cocconeis

costata Gregory var. costata. Contraste de fase. Fig. 66: valva con pseudorafe. Fig. 67:

valva con rafe. Figs. 68-69. Cocconeis costata var. hexagona Grunow. Contraste de fase.

Fig. 68: valva con pseudorafe. Fig. 69: valva con rafe. Fig. 70. Cocconeis sp. Contraste

de fase.

Figs. 71-72. Coscinodiscus janischii Schmidt. Fig. 71: vista general de la valva. Contraste

de fase. Fig. 72: detalle de los alvéolos del centro de la valva. Fotomicrografía obtenida

con el microscopio electrónico de transmisión. Fig. 73. Cocconeis placentula var.

euglypta (Ehr.) Cleve. Valva con pseudorafe. Fotomicrografía obtenida con el micros-

copio electrónico de transmisión. Figs. 74-76. Coscinodiscus perforatus var. cellulosa

Grunow. Contraste de fase. Fig. 74: vista general de la valva. Fig. 75: área central con

roseta y una pequeña área hialina. Fig. 76: área central sin área hialina.

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Fig. 77. Eunotia major (Wm. Smith) Rabenhorst. Contraste de fase. Fig. 78. Diatoma

tenue Agardh. Contraste de fase. Fig. 79. Cymbella tumida (Bréb.) Van Heurck. Contras-

te de fase. Figs. 80-81. Frustulia rhomboides (Ehr.) De Toni var. rhomboides. Contraste

de fase. Fig. 80: Vista general de la valva

- Fig. 81: detalle de un extremo. Fig. 82:

Frustulia rhomboides var. saxonica (Rabh.) De Toni. Contraste de fase.

Fig. 83. Frustulia vulgaris (lhw.) De Toni. Contraste de fase. Vista general de la valva.

Fig. 84. Gomphonema herculeanum var. robustum Grunow. Contraste de fase. Figs. 85-86,

Gomphonema herculeanum var. septiceps M. Schmidt. Contraste de fase. Fig. 87.

Gyrosigma balticum (Ehr.) Rabenhorst. Contraste de fase. Figs. 88-89. Gyrosigma

eximioides Rivera. Contraste de fase. Fig. 90. Gyrosigma terryanum f. fontanum

Reimer. Contraste de fase.

Figs. 91-92. Hantzschia virgata (Roper) Grunow. Contraste de fase. Variación del con-

torno valvar. Figs. 93-94. Melosira sol (Ehr.) Kútzing. Contraste de fase. Fig. 93: Río

Laraquete. Fig. 94: Bahía de Concepción. Fig. 95-96. Navicula auriculata Hustedt.

Contraste de fase. Figs. 97-98. Navicula bahustensis (Grunow) Grunow. Contraste de

fase. Fig. 99. Navicula cryptocephala var. veneta (Kútzing) Rabenhorst. Area central.

Fotomicrografía obtenida con el microscopio electrónico de transmisión,

Fig. 100. Navicula palpebralis Bréb. ex Wm. Smith. Contraste de fase. Figs. 101-102.

Navicula directa var. lata Ostrup. Contraste de fase. Fig. 101; vista general de la valva.

Fig. 102: detalle de la zona central y de las estrías. Fig. 103. Navicula dicephala var.

undulata Ostrup. Contraste de fase. Fig. 104. Navicula rhynchocephala Kiitzing var.

rhynchocephala. Contraste de fase. Fig. 105, Navicula pygmaea Kiitzing. Contraste de

fase.

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Fig. 106. Navicula spectabilis Gregory. Contraste de fase. Figs. 107-108. Navicula viri-

dula Kútzing emend. Van Heurck var. viridula. Contraste de fase. Fig. 109. Navi-

cula viridula var. rostellata (Kútzing) Cleve. Contraste de fase. Figs. 110-111. Navi

cula viridula var. linearis Hustedt. Contraste de fase. Fig. 110: vista general de la

valva. Fig. 111: detalle de la ornamentación. Figs. 112-113. Nitzschia amphibia Grunow.

Fig. 112: vista general de la valva. Contraste de fase. Fig. 113: detalle de la rafe, fibulae

y estrías. Fotomicrografía obtenida com el microscopio electrónico de transmisión.

Fig. 114. Nitzschia apiculata (Greg.) Grunow. Contraste de fase.

Figs. 115-117. Nitzschia pseudoseriata Hasle. Contraste de fase. Fig. 115: frústulos uni-

dos en un filamento mediante los extremos valvares. Figs. 116-117: detalle de una

valva. Figs. 118-120. Nitzschia Pungens Grunow emend. Hasle. Fig. 118: detalle de la

rafe, fibulae y poroides. Fotomicrografía obtenida con el microscopio electrónico de

transmisión. Figs. 119-120: vista general de la valva. Contraste de fase. Fig. 121.

Opephora martyi Heribaud. Contraste de fase.

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Figs. 122-123. Pinnularia borealis Ehrenberg. Contraste de fase. Fig. 124. Pinnularia

latevittata €. medioconstricta (Font.) Cleve-Euler. Contraste de fase. Fig. 125. Pinnularia

major (Kitzing) Rabenhorst. Contraste de fase. Fig. 126. Pinnularia viridis (Nitzsch)

Ehrenberg. Contraste de fase. Figs. 127-128. Pleurosigma salinarum Grunow. Contraste

de fase.

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Figs. 129-135. Surirella ovata var. smithi Cleve-Euler. Contraste de fase. Fig. 131. Syne-

dra rumpens var. familiaris (Kútzing) Hustedt. Contraste de fase. Figs. 132-133. Synedra

fasciculata (Agarth) Kútzing. Variación del contorno valvar. Contraste de fase. Figs.

134-135. Thalassiosira mendiolana Hasle £ Heimdal. Contraste de fase. Fig. 134: pro-

ceso marginal notorio. Fig. 135: ornamentación de la valva.

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INDICE DE TAXA

Los taxa analizados en este trabajo aparecen con letra normal; aquellos

cuyos nombres aparecen en el texto pero no son tratados en extenso se

indican con un asterisco. Los sinónimos aparecen con letra cursiva.

Achnanthes

affinis 7,12,15,70,73

exigua 7,13,14,16,70

hauckiana var. rostrata 7,16,73

lanceolata var. dubia 7, 12, 17,73

lanceolata var. rostrata 17

pinnata 7,12,17,73

temperei 7,17,73

Actinocyclus

curvatulus 4,7,8,13,17,74

subocellatus 17

subtilis 8,18,75

Actinoptychus

senarius 8,18,73

undulatus 18

Amphipleura

lindheimeri var. neotropica 8,14,19,70,75

rutilans 8,12,19,20

Amphora

exigua 8,19

libyca 19

ovalis var. libyca 8,19

splendida 8,14,21

Asterionella

formosa var. formosa 8,12,21,70

formosa var. gracillima 21

gracillima 21

Bacillaria

paradoxa 22

paxillifer 8,12,22,75

Bacteriastrum

elongatum* 22

sp. 8,22,70

Biddulphia

aurita var. obtusa 8,22

hyalina 23

longicruris var. hyalina 8,23

Caloneis

oregonica 23

westii 8,13,23,75

Campylodiscus

fastuosus 8,13,23

thureti 23

Ceratoneis

arcus var. amphioxys 8,24,76

arcus var. arcus 8,14,24,75

Chaetoceros 11

constrictus 8,24

debilis 8,25

diadema 8,25

didymus 8,25

eibenii 8,12,13,26

lorenzianus 8,13,26

radicans 8,13,26

scolopendra 26

socialis 8,13,27

Cocconeis

californica var. lengana 8,13,27,76

costata var. costata 8,13,27,76

costata var. hexagona 8,13,28,76

placentula var. euglypia 8,12,14,28,29,77

rugosa* 28

sp. 28,76

Coscinodiscus

divisus 18

janischii 8,12,13,30,77

marginatus 8,30

perforatus var. cellulosa 8,13,30,77

stellaris 8,13,31

Cyclotella

meneghiniana 8,14,31,70

meneghiniana í. nuda 31

Cymbella 11

hauckii var. chilensis f stigmata 4,7,8,13,91

minuta 8,32,70

naviculiformis 8,12,32,70

pusilla 8,13,33,70

sinuata 9,14,33,70

tumida 9,14,33,78

ventricosa 32

Denticula 9

subtilis 9,33,71

Detonula

pumila 4,9,13,34

Diatoma

elongatum var. tenue 34

elongatum var. tenuis f minus 34

tenue 934,78

Diploneis

chersonensis 9,35

ovalis 9,14,35

subovalis 9,35

Encyonema

lunula 32

ventricosum 32

Entopyla

australis 9,13,36

Epithemia

gibba 64

gibba var. ventricosa 64

zebra 9,36

Eunotia

arcus var. hybryda 37

major 9,15,36,78

monodon var. major 36

tenella 9,12,37,71

Fragilaria

intermedia 37

mutabilis var. intermedia 37

vaucheriae 9,14,37,71

Frustulia

romboides var. rhomboides 9,38,78

rhomboides var. saxonica 9,38,78

vulgaris 9,12,39,40,79

Gomphonema

hebridense 9,15,39

herculeanum var. robustum 7,9,14,39,79

herculeonum var. septiceps 7,9,14,39,79

micropus 41

parvulum var. lagenulum 41

parvulum var. micropus 41

parvulum var. parvulum 9,15,41

parvulum var. sube!lipticum 41

pseudoexiguum 9,41

Grammatophora

angulosa 9,13,42

marina 9,42

mexicana 42

Gyrosigma

balticum 9,12,43,79

eximioides 943,79

terryanum f fontanum 7,9,43,79

Hantzschia

virgata 9,44,80

Hyalodiscus

kerguelensis 9,13,44

Licmophora

abkbreviata 9,13,44,71

juergensii 9,13,45,71

lyngbyer 44

iyngbye: var. elongata 44

Melosira

granulata var. angustissima 9,15,45,71

nummuloides 9,45

sol 9,13,46,80

varians 9,15,46

Meridion

circulare var. constricta 9,13,47

constrictum 47

Navicula 11

ambigua 49

apis 35

auriculata 9,13,47,80

bahusiensis 7,9,47,80

borealis 59

cryptocephala var. cryptocephala 9,14,15,48,71

cryptocephala var. veneta 9,13,48,80

cuspidata var. ambigua 49

cuspidata í. craticula 49

cuspidata var. cuspidata 10,15,49

cuspidata var. heribaudii 10,15,49

cuspidata var. lanceolata 49

dicephala var. undulata 10,50,81

directa var. lata 7,10,50,81

divergens 60

formosa 23

gottlandica 7,10,13,50,71

lateropunctata 15,51,71

major 6l

mutica 10,51

palpebralis 10,51,81

pseudoreinhardti 10,13,52,71

pupula var. bacillarioides 52

pupula var. rectangularis 10,15,52,71

pygmaea 10,13,52,81

rhomboides 38

rhynchocephala var. amphiceros 10,14,15,53

rhynchocephala var. rhynchocephala 10,12,53,81

rostellata 54 |

spectabilis 10,14,53,82

stankovicii var. chilensis 10,12,13,53

viridis 62

viridula var. linearis 7,10,14,54,82

viridula var. rostellata 10,15,54,82

viridula var. viridula 10,15,54,82

Neidium

bisulcatum var. baicalense 10,15,55

Nitzschia 11

acicularis 10,15,55,72

amphibia 10,55,82

apiculata 10,56,82

dissipata 10,14,56,72

dissipata var. media 56

fraudulenta* 58

heimii* 58

ignorata 7,10,15,57,72

paradoxa 22

parvula 10,57,72

pseudoseriata 10,13,57,58,83

pungens 10,12,13,58,83

pungiformis* 58

seriata* 57,58

sigma 10,12,58,72

subpacifica* 58

virgata 44

Opephora

martyi 10,12,59,83

Pinnularia 11

borealis 10,15,59,84

brevicostata var. intermedia f cuneata 10,1460

divergens 10,60

intermedia var. hybrida 7,10,14,60,72

latevittata f —medioconstricta 10,15,61,84

major 10,15,61,84

viridis 10,12,62,84

Pleurosigma

baltica 43

intermedium 11,14,62

nubecula 62

salinarum 7,11,62,84

Pseudonitzschia seriata 57

Rhabdonema

arcuatum 11,14,63

Rhizosolenia

hebetata f semispina 11,14,63

styliformis var. longispina 63

Rhoicosphenia

curvata 11,63,72

Rhopalodia

gibba var. gibba 11,64

gibba var. ventricosa 11,12,64

musculus 11,65

Schróderella delicatula 34

delicatula í schroederi 34

Skeletonema

costatum 11,65

Stauroneis

araucana 4,7,11,13,65

Stephanopyxis

palmeriana 11,14,65

Surirella

cardinalis 66

craticula 49

guatimalensis 11,15,66,72

ovata var. smithii 11,66,85

robusta var. splendida 66

splendida 11,14,66

striatula 11,14,67

Syndendrium diadema 25

Synedra

affinis 67

arcus 67

familiaris 67,68

fasciculata 11,67,85

rumpens var. familiaris 11,67,72,85

tabulata 67

ulna 11,14,68

vaucheriae 37

Thalassiosira

aestivalis* 68

excentrica* 69

mendiolana 11,14,68,69,85

INDICE GENERAL

E A 3

A A 3

¿O ION ll et e dio e MPAA 3

EBTERIALES VIMETODOSO e ll ritmos 6

O 7

A 15

INES RATIA GENERAL > mr an 87

IE A 93

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR EN LOS

TALLERES DE LA IMPRENTA DE LA UNIVERSIDAD

DE CONCEPCION, EL DIA 4 DE MAYO DE 1979.

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investiga-

ciones originales del personal científico del Instituto de

Biología de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una

Zoológica y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada

Serie trabajos biológicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que

los números se publican tan pronto como la Comisión

Editora recibe las comunicaciones y su numeración es con-

tinuada dentro de cada Serie.

Gayana

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CasiLLA 301 — CONCEPCIÓN

CHILE

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ys ISSN 0016-5301

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BOTANICA 1981 N? 36

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FITOPLANCTON DE TRES CUERPOS LENTICOS

EN LA REGION DE CONCEPCION, CHILE

SEASONAL SUCCESSION AND PHYTOPLANKTON ASSOCIATIONS OF THREE

LENTIC FRESHWATER BODIES IN THE REGION OF CONCEPCION, CHILE

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UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

| CHILE

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CHTEE

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Jorge N. Artigas C.

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Sergio Avaria

Depto. de Oceanología, Montemar

Nibaldo Bahamonde

Museo Nacional de Historia

Natural, Santiago

Danko Brncic

Universidad de Chile, Santiago

Eduardo Bustos

Universidad de Chile, Santiago

Hugo Campos

Universidad Austral, Valdivia

Juan C. Castilla

Universidad Católica, Santiago

Eduardo del Solar

Universidad Austral, Valdivia

Raúl Fernández

Universidad de Chile. Santiago

Luis Ramorino

Depto. de Oceanología, Montemar

Jorge Redón

Universidad de Chile, Valparaíso

Bernabé Santelices

Universidad Católica, Santiago

- Federico Schlegel

Universidad Austral, Valdivia

José Stuardo

Depto. de Oceanología Montemar

Universidad de Concepción

Haroldo Toro

Universidad Católica, Valparaíso

GAYANA

BOTANICA 1981 N*? 36

PERIODICIDAD ESTACIONAL Y ASOCIACIONES EN EL

FITOPLANCTON DE TRES CUERPOS LENTICOS

EN LA REGION DE CONCEPCION, CHILE

SEASONAL SUCCESSION AND PHY TOPLANKTON ASSOCIATIONS OF THREE

LENTIC FRESHWATER BODIES IN THE REGION OF CONCEPCION, CHILE

OSCAR O. PARRA, EDUARDO UGARTE Y VICTOR DELLAROSSA

UNIVERSIDAD» BESO NCEPCION

CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”

CLAUDIO GAY. Hist. de Chale, [: 14 (1848).

Impreso en

EDITORIAL UNIVERSITARIA

San Francisco 454

Santiago, Chile

INDICE

AS NA orinar

A AE E A AR A II AA

A AP A IA A

O O A E IR A

O II O A

Variaciones cuantitativas del fitoplanctón total por grupos taxonómicos y

o AM E IA IS

MS de iOplanctón y. 6 >“ RRA AA DIA

IES e CLOS . A e ens ión

— ASA o A

A A A

AA O AAA

o 1% 9 AA

el 7 E

o a y E =

o n

NE LN " e ad Ñ

o =

¿ES

ASOMO

| ir

, MT |

u s

PERIODICIDAD ESTACIONAL Y ASOCIACIONES

EN EL FITOPLANCTON DE TRES CUERPOS LENTICOS

EN LA REGION DE CONCEPCION, CHILE*

SEASONAL SUCCESSION AND PHYTOPLANKTON ASSOCIATIONS

OF THREE LENTIC FRESHWATER

BODIES IN THE REGION OF CONCEPCION, CHILE

OSCAR O. PARRA, EDUARDO UGARTE Y VICTOR DELLAROSSA**

RESUMEN

Se estudió comparativamente las comunidades fitoplanc-

tónicas de tres lagunas ubicadas en la Región de Concep-

ción, Chile.

En cada cuerpo de agua se registró la periodicidad en

un ciclo anual y se identificó las asociaciones y especies

dominantes. Se discute el desarrollo de floraciones de:

Aphanizomenon flos-aquae, Microcystis aeruginosa y Melosira

granulata.

Se incluyen dibujos y microfotografías de algunas es-

pecies.

SUMMARY

The phytoplanctonic communities from three small lakes

located in Concepción, Chile were comparatively studied.

The successional periodicity, the associations, and do-

minant species were registered. Bloom development of

Aphanizomenon flos-aquae, Microcystis aeruginosa and Melosi-

ra granulata are discussed.

Drawings and microphotographs of some of the spe-

cies are included.

INTRODUCCION

La información de que se disponía al inicio de

la presente investigación sobre el fitoplancton

de las lagunas “Chica de San Pedro”, “La Posa-

da” y “Lo Méndez”, estuvo basada en coleccio-

nes esporádicas y/o restringidas a muestras

extraídas sólo desde niveles superficiales. Cro-

nológicamente, Thomasson (1963), señala 15

fitoplancteres para Laguna Chica de San Pe-

dro; Ramírez (1966), informa 21 especies para

Laguna Lo Méndez; Rivera (1970), señala 27

taxa de diatomeas para Laguna Chica de San

Pedro y Furet y Klenner (1970), 12 fitoplanc-

teres para el mismo cuerpo de agua; Rivera

(1974) reporta 46 y 27 taxa de diatomeas para

La Posada y Lo Méndez respectivamente. Pa-

rra (1975) señala 94 taxa de desmidiaceas para

La Posada y 6 para Lo Méndez. Finalmente,

Parra et al. (1976) y Dellarossa et al. (1976),

*Proyecto 208.31 financiado por Vicerrectoría de Investigación Científica. Universidad de Concepción. Concep-

ción, Chile.

**Universidad de Concepción.

Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales

Departamento de Botánica

Casilla 2407. Concepción, Chile.

describen el fitoplancton de invierno de las

tres lagunas y sus variaciones cualitativas y

cuantitativas junto con las fluctuaciones de al-

gunos factores abióticos.

El objetivo de la presente publicación es

entregar un análisis comparativo de las varia-

ciones en la composición cualitativa y cuantita-

MATERIALES

En la Fig. 1 se indica la ubicación geográfica de

los cuerpos de agua.

Las muestras cualitativas superficiales se

obtuvieron mediante arrastre de red (35 um) a

velocidad de remo durante 5-8 minutos. Las

muestras cuantitativas se obtuvieron filtrando

20 litros de agua superficial y 5 litros para las

muestras extraídas de profundidades median-

te botella Van Dorm (las profundidades co-

rrespondientes a cada laguna se indican en la

Fig. 5). La fijación (solución de yodo saturada)

y recuentos, se hicieron según Utermohl

RESULTADOS

COMPOSICION Y SUCESION ESTACIONAL

EN EL FITOPLANCTON

En la Tabla I se presenta una lista de los taxa

registrados durante el período de muestreo.

En la Tabla II y Fig. 2 se entrega el número de

taxa por cuerpo de agua.

En la Fig. 3 se entrega la variación en el

número de especies en cada laguna, separados

según los grupos principales integrantes del

fitoplancton de cada laguna. Las fluctuaciones

en la abundancia de las especies más impor-

tantes se muestran en la Fig. 6.

LAGUNA LO MENDEZ

Se determinó 70 taxa repartidos en: 6 Cya-

nophyceae, 3 Dinophyceae, 1 Chrysophyceae,

24 Bacillariophyceae, 4 Euglenophyceae y 32

Chlorophyceae.

Cyanophyceae. Los géneros cuantitativamente

más importantes fueron Aphanizomenon y Ma-

crocystis. Las especies restantes, de aparición

tiva del fitoplancton de las Lagunas Chica de

San Pedro, La Posada y Lo Méndez, detecta-

das según un programa de muestreo de perio-

dicidad mensual, con varios niveles de pro-

fundidad; se pone énfasis en la manifestación

de floraciones acuáticas (“blooms”).

Y METODOS

(1958). Para la identificación se utilizó mues-

tras vivas y fijadas. El material de referencia se

guarda en la colección de microalgas del De-

partamento de Botánica, Universidad de Con-

cepción, Chile. Las muestras fueron extraídas

entre septiembre de 1975 y agosto de 1976

con periodicidad mensual.

La metodología utilizada para la determi-

nación de los parámetros abióticos, así como

las características químicas más relevantes de

los cuerpos de agua, se indican en Dellarossa et

al. (1976) y Parra et al. (1980).

DIS CUSTO NES

esporádica, pertenecen a Merismopedia y Osci-

llatoria.

Entre febrero y agosto de 1976 se verificó

una floración de Macrocystis aeruginosa que rea-

pareció en agosto del mismo año. Aphanizome-

non flos-aquae presentó características de flora-

ción en julio-agosto de 1976.

Dinophyceae. Estuvo representada por una es-

pecie de Gymnodinium y dos de Peridimum, una

de las cuales persistió durante 8 meses con

valores significativos entre enero y abril de

1976 (Fig. 6).

Chrysophyceae. Se registró sólo una especie de

Mallomonas entre marzo y agosto de 1976.

Bacillarnophyceae. Entre las diatomeas céntricas

se registró sólo dos especies de Melosira: M.

varians escasa y presente sólo entre julio y sep-

tiembre y M. granulata presente todo el ciclo

con máximos de abundancia en septiembre de

1975 y entre abril y julio de 1976. M. granulata

predominó claramente en esta laguna. Rivera

Tabla 1

DISTRIBUCION ESTACIONAL DE LAS ESPECIES ENCONTRADAS

EN LAS LAGUNAS LO MENDEZ, CHICA DE SAN PEDRO Y LA POSADA

LAGUNA LO MENDEZ

told

tad

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

OCTUBRE

“

FEBRERO

MARZO

ABRII

BACTERIOPHYTA

Tetrachloris

merismopedioides Skuja X A o:

FUNGI

Planctomyces

beckefii Gimes1 (1: 1) Xx X Xx xX Xx

CYANOPHYCEAE

Merismopedia

glauca (Ehrenberg) Naegeli x

convoluta Brébisson (6:5) Xx Xx

Maicrocystis

aeruginosa Kuetzing (6:6-8) ll AIRIS > 40 LS

Oscillatoria

tenuis Agardh Xx Xx

spp. X x x x x Xx Xx x x

Aphanizomenon

flos-aquae (L) Ralfs 313108 1x0 1 AIR Xx

DINOPHYCEAE

Peridinium .

sp. (7:8 y 9) X sl X TAIANA

sp. Xx x Xx Xx Xx Xx

Gymnodinium

sp. Xx Xx

CHRYSOPHYCEAE

Mallomonas

sp. Xx xa lcd

BACILLARIOPHYCEAE

Melosira

granulata (Ehrenberg) Ralfs M1 A O A ES PES

varians Agardh (8:10) x x

Synedra

socia Wallage x

ulna (Nitzsch) Ehrenberg (8:5) 1 <A A E E SED 2 cda id ju

radians Kuetzing XxX x x x Xx x Xx xx x

Achnanthes

lanceolata (Brébison) Grunow var. duvia Grunow x

Diploners

subovalis Cleve = x x

Frustula

patrickn Rivera Xx

Gyrosygma

spenceri (Quick.) Griffith et Henfrey xl x

Gomphonema |

acuminatum Ehrenberg x x Xx

constrictum Ehrenberg E

Navicula

decussis Ostrup o 0 ESA

salinarum, Grunow var. intermedia (Grunow) Cleve x

vindula (Kuetzing) Kuetzing emend Van Heurck x x 1 MI

var. avenacea (Brébisson ex Grunow) Van

Heurck

Nota: Los números entre paréntesis corresponden al número de la lámina y de las figuras.

LAGUNA LO MENDEZ

“Cymbella

ventricosa Kuetzing

gracilis (Rabenhorst) Cleve

tumida (Brébisson) Van Heurck

cymbiformis Agardh

affinis Kuetzing

Epiúhema

sorex Kuetzing

Nitzschia

kuetzangiana Hilse

dissipata (Kuetzing) Grunow

Stenopterobia

intermedia (Lewis) Fricke

Cymatopleura

solea (Brébisson) W. Smith

Ceratonets

arcus (Ehrenberg) Kuetzing

EUGLENOPHYCEAE

Euglena

acus Ehrenberg (1:2)

Phacus

longicauda (Ehrenberg) Dujardin (1:3)

tortus (Lemmermann) Skvortzow

Trachelomonas

hispida (Perty) Stein

sp. (7:5)

sp. (7:6)

CHLOROPHYCEAE

Eudorina

elegans Ehrenberg (9:1)

Pandorina

morum (Múller) Bory

Oocystis

lacustris Chodat

Ankistrodesmus

falcatus (Corda) Ralfs

Monoraphidium

gruffithi (Berkeley) Komárková-Legnerová

Treubaria

trrappendiculata Bernard

Tetraedron

minimum (A. Braun) Hansgirg (1:6)

Micractinium

pusillum Fresenius (10:9)

Scenedesmus

acuminatus (Lagerheim) Chodat (3: 1-3; 11:2)

acutus Meyen

ecornis (Ralfs) Chodat (3:6)

ecornis (Ralfs) Chodat var. disciformis Chodat (3:5)

opoliensis P. Richter (4: 1-3, 5 y 7; 11:3 y 4)

protuberans Fritsch

quadricauda (Turpin) Brébisson (4:4 6 y 8-11; 11:1)

quadricauda fma. granulatus Hortobagyi

quadricauda var. quadrispina (Chodat) G.M. Smith

(3:8)

(9)

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

FEBRERO

A AAA AAA

MARZO

ABRIL

LAGUNA LO MENDEZ

spinosus Chodat

thomassonú Hortobagyi (3:7)

Selenastrum

gracile Reinsch

Pediastrum

borvanum (Turpin) Meneghini (12:6)

duplex Meyen (11:7-9)

simplex Meyen (5;1-5; 12:1-5)

tetras (Ehrenberg) Ralfs

Coelastrum

cambricum Archer

macroporum Naegeli

prosboscideum Bohlin (10:4)

sphaericum Naegeli

Closterium

acerosum (Schrank) Ehrenberg

gracile Brébisson

moniliferum (Bory) Ehrenberg

Cosmartum

laeve Rabenhorst

Staurastrum

chaetoceras (Schroeder) G.M. Smith (14:8)

longipes (Nordstedt) Teiling

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

CYANOPHYCEAE

Merismopedia

glauca (Ehrenberg) Naegeli

convoluta Brébisson

Gomphosphaeria

lacustris Chodat (6:2, 3 y 4)

Maicrocystis

elachista (W.etG.S. West) Starmach fma. planctonica

(G.M. Smith) Starmach (6:1 y 4)

aeruginosa Kuetzing

Gloeotrichia

natans (Hedwid) Rabenhorst

Anabaena

sp.

Oscillatoria

sp.

DINOPHYCEAE

Peridinium

sp. 1

sp. 2

sp. 3

Gymnodinium

sp.

[+]

hal

SEPTIEMBRE

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

¡ DICIEMBRE

¡o

FEBRERO

MARZO

AGOSTO

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

CHRYSOPHYCEAE

Dinobryon

divergens Imhof

Mallomonas

sp.

Stylococcus

aureus Chodat

BACILLARIOPHYCEAE

Melosira

granulata (Ehrenberg) Ralfs

Cyclotella

meneghiniana Kuetzing

Ceratoneis

arcus (Ehrenberg) Kuetzing

Synedra

ulna (Nitzsch) Ehrenberg

rumpens Kuetzing var. familiaris (Kuetzing) Hustedt

Diploneis

subovalis Cleve

Amphapleura

lindheimer: Grunow

Eunota

flexuosa (Brébisson) Kuetzing var. tinearis

Okuno

Gyrosigma

spenceri (Quik.) Griffith et Henfrey

Navicula

radiosa Kuetzing

decussis Ostrup

viridula (Kuetzing) Kuetzing emend Van Heurck

var. avenacea (Brébisson ex Grunow) Van

Heurck. (8:9)

Neidium

indis (Ehrenberg) Cleve

Gomphonema

parvulum Kuetzing

Pinnularia

divergens W. Smith

latevittata Cleve fma. medioconstricta (Font.) Cleve-

Euler

major (Kuetzing) Rabenhorst var. transversa (A.S.)

Cleve

Cymbella

gracilis (Rabenhorst) Cleve

lanceolata (Ehrenberg) Van Heurck

cymbiformis Agardh

sinuata Gregory

Stauroneis

anceps Ehrenberg

Epithema

zebra (Ehrenberg) Kuetzing

Rhopalodia

giba (Ehrenberg) O. Mueller

Nitzschia

kuetzingiana Hilse

levidensis (W. Smith) Van Heurck

Hantzschia

elongata (Hantzsch) Grunow

OCTUBRE

Xx XxX

XxX XxX

Xx XxX

XxX

XxX Xx

XxX

Xx XxX

XxX

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

FEBRERO

AGOSTO

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

pen

”.

sad

had

OCTUBRE

Stenopterobia

intermedia (Lewis) Fricke

Surirella

biseriata Brébisson (8:6) X Xx

guatimalensis Ehrenberg (8:1 y 2) lx

robusta Ehrenberg var. splendida (Ehrenberg) Van X

Heurck

EUGLENOPHYCEAE

Phacus

longicauda (Ehrenberg) Dujardin

CHLOROPHYCEAE

Tetraspora

lacustris Lemmermann Xx

Chlamydocapsa

bacillus (Teiling) Fott (9:2)

planctonica (W. et G.S. West) Fott Xx

Oocystis

lacustris Chodat

sp. X

Ankistrodesmus

falcatus (Corda) Ralfs

Kirchneriella

obesa (W. West) Schmidle

lunaris (Kirchner) Moebius

contorta (Schmidle) Bohlin

Quadrigula

closterioides (Bohlin) Printz

Sphaerocystis

schroeteri Chodat (9:3 y 5) xl Xx

Botryococcus

brauniú Kuetzing 3 ix

Dimorphoccus

lunatus A. Braun

Radiofilim

conjunctivum Schmidle (1-8)

Elakatothrix

gelatinosa Wille

Crucigentella

rectangularis (Naegeli) Komárek

Scenedesmus

denticulatus Kirchner

ovalternus Chodat

quadricauda Chodat

Pediastrum

duplex Meyen

boryanum (Turpin) Meneghini

integrum Naegeli

angulosum (Ehrenberg) Meneghini

Oedogontum

spp. x

Bulbochaete

spp.

Spirogyra

spp. |

Zygnema |

spp. :

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

ENERO

FEBRERO

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

[=>]

Mougeotia

spp.

Gonatozygon

aculeatum Hastings

monotaenium De Bary

puosum Wolle

Pleurotaentum

ehrenbergú (Brébisson) De Bary

trabecula (Ehrenberg) Naegeli

Euastrum

ansatum Ehrenberg

Macrasterias

truncata (Corda) Brébisson

Cosmarum

capitulum Roy et Bisset

connatum Brébisson

contractum Kirchner

cucumis Corda ex Ralfs (13:10)

moniliforme (Turpin) Ralfs var. panduriforme (Hel-

merl) Schmidle

monomazum Lundell var. polymazum Nordstedt

ochthodes Nordstedt var. amoebum West Xx

phaseolus Brébisson in Ralfs

pseudopyramidatum Lundell

subspeciosum Nordstedt var. validius Nordstedt

obtusatum Schmidle

subtumidum Nordstedt var. borges Krieger et Gerloff

Xanthidium

antilopaeum (Brébisson) Kuetzing

Staurodesmus

cuspidatus (Brébisson) Teiling

dejectus (Brébisson) Teiling

dejectus var. apiculatus Teiling

dickiei (Ralfs) Lillieroth

mamillatus (Nordstedt) Teiling

tnangularis (Lagerheim) Teiling

subulatus (Kuetzing) Croasdale

Staurastrum

asterias Nygaard

avicula Brébisson var. subarcuatum (Wolle) x

W. et G.S. West (14:6)

bibrachiatum Reimsch

bicorne Hauptfl.

bieneanum Rabenhorst

curvimarginatum Scott et Grónblad

dilatatum Ehrenberg in Ralfs

furcigerum Brébisson (14:13)

gladiosum Turner

gracile Ralfs : x

laeve Ralfs (14:11) x

leptocladum Nordstedt

leptacanthum Nordstedt in West

longipes (Nordstedt) Teiling Xx

manfeldtiz Delpin var. annulatum W. et G.S. West

orbiculare Ralfs in W. et G.S. West

polymorphum Brébisson in Ralfs

quadrangulare Brébisson in Ralfs

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

ENERO

FEBRERO

MARZO

ABRIL

”

(2)

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

SEPTIEMBRE

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

FEBRERO

AGOSTO

MARZO

ENERO

quadrangulare var. contectum (Turner) Gróblad

rotula Nordstedt

tetracerum Ralts

tohopekaligense Wolle (14:12)

trifidum Nordstedt var. imflexum W. et G.S. West

triforcipatum W. et G.S. West

Hyalotheca

dissiliens (Smith) Brébisson in Ralfs

mucosa (Mertens) Ehrenberg

Sphaerozosma

aubertianum West

laeve Nordstedt

Desmidium

swartzn Agardh

Bambusina

brebissonú Kuetzing

LAGUNA LA POSADA

SEPTIEMBRE

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

FEBRERO

MARZO

AGOSTO

CYANOPHYCEAE

Mensmopedia

glauca (Ehrenberg) Naegeli e Ma ES X x PUR 20O Mo

Gomphosphaeria

lacustris Chodat AER ES dl

Aphanothece

sp. Xx Xx

Macrocystis

elachista (W. et G.S. West) Starmach ftma. planctonica MR MEA AA Xx MX x

(G.M. Smith) Starmach

aeruginosa Kuetzing x x Xx

grevilles (Hassal) Elenkin emend. Starmach fma. Xx E:

pulchra (Kuetzing) Elenkin

Anabaena

solitaria Klebahn fma. planctonica (Brunthaler) Ko- x lx ix (US IE > del lo

márek

sp. > 4 Xx X

Cylindrospermum

sp. x

Spirulina

subsalsa Oerstedt x

Pseudanabaena

catenata Lauterborn Xx 2 E Po

Oscillatoria

migroviridass Thwaites Xx Xx x

rubescens (D.C.) Gomont x

sancta (Kuetzing) Gomont x X

tenuis Agardh x

Lyngbya

sp. 7%

LAGUNA LA POSADA

DINOPHYCEAE

Peridintum

sp.

Gymnodinium

sp.

CHRYSOPHYCEAE

Dinobryon

divergens Imhof (1:4)

Synura

uvella Ehrenberg (7:1-3)

Mallomonas

sp. (1:4)

XANTHOPHYCEAE

Pseudostaurastrum

gracile (Reinsch) Chodat (1:5)

BACILLARIOPHYCEAE

Melosira

granulata (Ehrenberg) Ralfs

Synedra

socia Wallage

radians Kuetzing

ulna (Nitzch) Ehrenberg

Ceratoneis

arcus (Ehrenberg) Kuetzing

Eunotta

flexuosa (Brébisson) Kuetzing var. linearis Okuno

Achnanthes

hungarica Grunow

pinnata Hustedt

Cocconets

placentula Ehrenberg var. euglypta (Ehrenberg)

Grunow

Diploners

subovalis Cleve

Frustulia

patricka Rivera

vulgaris (Thwaites) De Toni

Gyrosigma

spenceri (Quik.) Griffith et Henfrey

Stauroneis

anceps Ehrenberg fma. gracilis Rabenhorst

phoenicenteron (Nitzch) Ehrenberg fma. gracilas

(Ehrenberg) Hustedt

Navicula

cuspidata (Kuetzing) Kuetzing

decussis Ostrup

radiosa Kuetzing

rhynchocephala Kuetzing

salinarum Grunow var. intermedia (Grunow) Cleve

viridula (Kuetzing) Kuetzing emend Van Heurck

Pinnularia

biceps Gregory

brebissoni (Kuetzing) Rabenhorst var. diminuta

(Grunow) Cleve

[ES]

Es]

[28

[25]

(9)

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

ENERO

eS]

MAYO

paa

¡aa

LAGUNA LA POSADA

Le]

PAS

major (Ruetzing) Rabenhorst var. linearis Cleve X

(8:3)

substomatophora Hustedt

viridis Nitzsch X

Neidun

sp.

Cymbella

cymbiformis Agardh x

gracilis (Rabenhorts) Cleve

haucku Van Heurck var. chilensis Rivera

lanceloata (Ehrenberg) Van Heurck (8:7 y 8)

Gomphonema

constrictum Ehrenberg

gracile Ehrenberg Xx

hebridense Gregory

parvulum

Epithemia

zebra (Ehrenberg) Kuetzing

Stenopterobia

intermedia (Lewis) Fricke x

Nuzschia

acicularioide Hustedt

kuetzingiana Hilse x

thermalis (Ehrenberg) Auersw. var. minor Hilse

Hantzschia

elongata (Hantzsch) Grunow

Sunrella

biseriata Brébisson x

guatimalensis Ehrenberg

robusta Ehrenberg var. splendida (Ehrenberg) Van Xx

Heurck

tenera Gregory

EUGLENOPHYCEAE

Euglena

spirogyra Ehrenberg

sp. x

Phacus

sp. x

Trachelomonas

hispida (Perty) Stein Xx

CHLOROPHYCEAE

Eudorina

elegans Ehrenberg

Pandorina

morum (Mueller) Bory Xx

Gontum

pectorale Mueller

Chlamydocapsa

bacillus (Teiling) Fott

planctonica (W. et G.S. West) Fott

Sphaerocystis

schroeteri Chodat (2:9) x

Oocystis

lacustris Chodat

sp.

Treubaria

tnappendiculata Bernard

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

ENERO

LAGUNA LA POSADA

Ankistrodesmus

falcatus (Corda) Ralfs

spiralis (Turner) Lemmermann

Kirchnenella

contorta (Schmidle) Bohlin (2:6)

elongata G.M. Smith

lunaris (Kirchner) Moebius (2:5 y 7)

obesa (W. West) Schmidle (2:8)

Selenastrum

gracile

Quadnigula

closterioides (Bohlin) Printz (2:4; 10:5)

Dimorphococcus

lunatus A. Braun (10:6 y 8)

Dictyosphaerrum

pulchellum Wood

ehrenbergianum Naegeli

Crucigemella

aff. apiculata (Lemmermann) Komárek (2:1 y 2)

rectangularis (Naegeli) Komárek (2:3)

Nephrocyttum

sp. (10:7)

Scenedesmus

acutus Meyen

denticulatus Kirchner

brevispina (G.M. Smith) Chodat (11:5)

quadricauda (Turpin) Brébisson

quadricauda fma. granulatus Hortobagyl

spinosus Chodat

Tetradesmus

wisconsinensis G.M. Smith (3:9)

Pediastrum

angulosum (Ehrenberg) Meneghini (11:6 y 10)

boryanum (Turpin) Meneghini

duplex Meyen

duplex var. punctatum (Krieger) Parra

tetras (Ehrenberg) Ralfs

sp. (12:7 y 8)

Coelastrum

cambricum Archer

proboscideum Bohlin

Sorastrum

spinulosum Naegeli

Geminella

minor (Naegeli) Heering (10:1)

Elakatothrix

gelatinosa Wille (1:7)

Radiofilum

conjunctivum Schmidle (10:2 y 3)

Ulothrix

sp.

Oedogonium

undulatum (Brébisson) A. Braun

spp.

Bulbochaete

spp.

[a]

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

XA A -= »

ENERO

FEBRERO

MARZO

”

LAGUNA LA POSADA

Spirogyra

spp.

Zygnema

spp.

Mougeotía

spp.

Gonatozygon

aculeatum Hastings (13:1 y 2)

brebissoni De Bary

monotaentum De Bary (13:3 y 4)

pilosum Wolle

Penvum

margaritaceum (Ehrenberg) Brébisson

Closterium

acerosum (Schrank) Ehrenberg

aciculare T. West

acutum Brébisson

calosporum Wittrock

gracile Brébisson

dianae Ehrenberg

kuetzanga Brébisson

pronum Brébisson

Pleurotaentum

ehrenbergn (Brébisson) De Bary

ghrenbergu var. undulatum Schaar.

ovatum Nordstedt

trabecula (Ehrenberg) Naegeli

trabecula var. rectum (Delpin) W. et G.S. West

Euastrum

ansatum Ehrenberg

denticulatum (Kirchner) Gay

gemmatum Brébisson in Ralfs

Maicrasterias

denticulata Brébisson

radiosa Ralfs var. ornata Nordstedt fma. elegantior

G.S. West (13:6 y 8)

rotata (Greville) Ralfs

truncata (Corda) Brébisson (13:7)

Cylindrocystas

brebissoni Meneghini

Actinotaentum

cruciferum (De Bary) Teiling

Cosmarrum

araucaniensis Thomasson

binum Nordstedt

bioculatum Brébisson in Ralfs

bireme Nordstedt

bireme var. huzeli Fórster

blytta Wille

circulare Reinsch

connatum Brébisson in Ralís

contractum Kirchner (15:4)

caprtulum Roy et Bisset

depressum Naegeli

depressum var. circulare Krieger et Gerloff

depressum var. elevatum Borge

Lal

OCTUBRE

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

ENERO

FEBRERO

AA >.)

LAGUNA LA POSADA

[0]

15]

79)

NOVIEMBRE

DICIEMBRE

FEBRERO

ENERO

MARZO

ABRIL

laeve Rabenhorst x x

laeve var. octangulare (Wille) W. et G.S. West x Xx

minimum W. et G.S. West x x

moniliforme (Turpin) Ralfs var. panduriforme (Hei- y A EA o o E

merl) Schmidle (13:5)

obtusatum Schmidle x

ochthodes Nordstedt var. amoebum West

ornatum Ralífs

ovale Ralfs

portanum Archer x

pseudoconnatum Nordstedt (13:9)

phaseolus Brébisson in Ralfs a

monomazum Lundell var. polymazum Nordstedt ls e IA E A [ES

speciosstmun Schmidle yd x

subspeciossum Nordstedt x x

subspeciossum var. validius Nordstedt X

subtumidum Nordstedt var. borges Krieger et Gerloff A A E

trilobulatum Reimsch var. bioculatum Krieger Xx

Xanthidium

antilopaeum (Brébisson) Kuetzing (15:10) x x x x x Xx x x x x x x

Arthrodesmus

octocornis Ehrenberg» x x

Staurodesmus

convergens (Ehrenberg) Teiling 3 IA

convergens var. depressum (Woloz.) Teiling

convergens var. pumilus (Nordstedt) Teiling

connatus (Lundell) Teiling x

corniculatus (Lundell) Teiling x

cuspidatus (Brébisson) Teiling (15:6 y 7) x Xx XxX

dejectus (Brébisson) Teilling 3

dejectus var. apiculatus Teiling (15:3)

dickier (Ralfs) Lillieroth (15:1) x xi X x Xx

dickier var. maximus (West) Thomasson xX x

extensus (Borge) Teilling x y x x x

glaber (Ehrenberg) Teiling

indentatus (West) Teiling Xx x x Xx Xx

mamillatus (Nordstedt) Teiling x

mucronatus (Ralfs) Croasdale var. subtriangularis

(West) Croasdale

pachyrrynchus (Nordstedt) Teiling

patens (Nordstedt) Croasdale SI E (5 ES: Xx A lis x

phimus (Turner) Thomasson EAS

spencianus (Mask.) Teiling x

subulatus (Kuetzing) Croasdale (15:6 y 7) aX

tnangularis (Lagerheim) Teilling Xx

validus (West) Thomasson

Staurastrum

arcuatum Nordstedt (14:7) xi

alternans Brébisson in -Ralfs A Es

asterias Nygaard in Krieger A

asteroideum W. et G.S. West var. nanum (Wille)

Grónblad

bidentulum Grónblad fma. major Thomasson 0 ON E

bieneanum Rabenhorst IA | Xx

bibrachiatum Reinsch (14:10) xX

curvimarginatum Scott et Grónblad (15:2 y 8)

dilatatum Ehrenberg in Ralfs

E CO

JT E O

A > A >< ”

”

pod

”

» A

DoS

ee A

”

A -=

”

y» >)»

PA AA

LAGUNA LA POSADA

hurcigerum Brébisson in Meneghini

gladiosum Turner in W. et GS. West (14:2)

gracile Ralts

laeve Ralts

leptacanthum Nordstedt in West

leptocladum Nordstedt (14:9)

manfeldtu Delpin var. annulatum W. et G.S. West

(14:5)

orbiculare Ralfs in W. et G.S. West

orbiculare var. depressum Roy et Bisset (15:9)

pinnatum Turner var. reductum Krieger

polymorphum Brébisson in Ralts

polymorphum var. cinctum Messikorner

punctulatum Brébisson in Ralfs var. ellipticum Lewin

quadrangulare Brébisson in Ralfs

quadrangulare var. contectum (Turner) Grónblad

(14:1)

quadrispinatum Turner

rotula Nordstedt (14:3 y 4)

muticum Brébisson

sebaldi Reinsch var. ornatum Nordstedt fma. plancto-

nica (Lútkemúller) Teiling

setigerum Cleve

stnolatum (Naegeli) Archer

sexcostatum Brébisson var. productum West

tetracerum Ralfs

tohopekaligense Wolle

trnfidum Nordstedt var. inflexum W. et G.S. West

tnforcipatum W. et G.S. West

vestitum Ralfs

Hyalotheca

dissiliens (Smith) Brébisson in Ralfs

mucosa (Mertens) Ehrenberg

Bambusina

brebissoni Kuetzing

Terlingia

granulata (Roy et Bisset) Bourrelly

Sphaerozosma á

aubertianum West (15:12 y 13)

laeve Nordstedt (15:11)

Desmidium

baileyi (Ralfs) De Bary

cilindricum Greville

swartzú Agardh

(1974) señala 3 diatomeas céntricas que in-

cluyen a las dos antes citadas más Cyclotella

meneghiniana, que no fue detectada en la pre-

sente investigación.

De los 23 taxa de diatomeas penadas regis-

trados, el mayor número pertenece a Cymbella

SEPTIEMBRE

OCTUBRE

DICIEMBRE

FEBRERO

AGOSI1O

ENERO

52]

(e)

seguido por Synedra y Naucula. Synedra (S.

ulna, S. radians) se presentó durante todo el

año con máximos en octubre y diciembre de

1975. Las especies restantes se presentaron en

períodos más cortos y valores cuantitativos

bajos; las más frecuentes fueron: Navicula vin-

dula var. avenacea, Cymbella ventricosa, Cymbella

tumida, Cymbella cymbiformas, Epithemia sorex y

Nitzschia kuetamgiana.

Tabla Il

NUMERO DE TAXA POR GRUPO DE ALGAS EN LOS

CUERPOS DE AGUA ESTUDIADOS

LO CHICA LA

MENDEZ SANPEDRO POSADA

Cyanophyceae 6 8 16

Dinophyceae 3 4 4

Chrysophyceae ] 3 3

Xanthophyceae - - 1

Bacillariophyceae 25 31 45

Euglenophyceae 5 1 4

Chlorophyceae 32 83 174

Volvocales 2 - 3

Tetrasporales - 3 2

Chlorococcales 24 16 34

Ulothricales - 2 3

Oedogoniales - 2 3

Zygnemales 6 60 129

Zygnemataceae - 3 %

Desmidiaceae 6 51 126

TLO TAME 72 130 247

De las 24 diatomeas penadas citadas por

Rivera (loc. cit.), las siguientes no fueron de-

tectadas: Achnanthes hungarica, Cocconeis pla-

centula var. euglypta, Frustulia vulgaris, Gompho-

nema montanum var. subclavatum, Navicula viri-

dula var. rostellata, Surirella ovata var. smithú y

Synedra acus.

Diploneis subovalis, Cymbella affiniss, Cymato-

pleura solea y Ceratoneis arcus no habían sido

citadas con anterioridad para esta laguna.

Chlorophyceae. Se registró 32 taxa repartidos

en 24 Chlorococcales, 2 Volvocales y 6 Zygne-

matales.

Scenedesmus registró el mayor número de

especies entre las Chlorococcales, con valores

cuantitativos máximos en septiembre-octubre

de 1975 y marzo-abril y agosto de 1976 (Fig.

6). $. acuminatus, S. opoliensis y S. quadricauda se

presentaron durante todo el año. Otras Chlo-

rococcales frecuentes fueron: Oocystis lacustris,

Ankistrodesmus falcatus, Tetraedron minimun, Mi-

cractimum pusillum, Scenedesmus ecornas var. dis-

ciformas, Scenedesmus spinosum, Pedriastrum du-

plex, P. boryanum y Coelastrum microporum.

De las Volvocales se registró sólo a Eudorina

elegans y Pandorina morum, escasamente pre-

sentes en un solo mes.

Las Zygnematales incluyeron los géneros

de Desmidiaceae: Closterium, Cosmarium y

Staurastrum que en conjunto estuvieron repre-

sentados sólo por 6 taxa. Staurastrum chaetoce-

ras se presentó durante todo el año, y a veces

en gran cantidad (septiembre de 1975). Closte-

rium gracile se presentó desde abril hasta octu-

bre de 1976 con valores apreciables. Parra

(1975) cita 6 especies de desmidiaceas para

Laguna Lo Méndez, de las que no fue posible

detectar: Cosmarium circulare, C. circulare var.

minor y Staurastrum chaetopus. Clostervum acero-

sum y Closterium moniliferum no habían sido

citados para esta laguna.

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

Se determinó 131 taxa repartidos en: 8 Cya-

nophyceae, 4 Dinophyceae, 3 Chrysophyceae,

31 Bacillariophyceae, 1 Euglenophyceae y 83

Chlorophyceae

Cyanophyceae. Sólo Gomphosphaeria lacustris y

Maicrocystis elachista £ma. planctonica se presen-

taron a lo largo de todo el ciclo y con valores

altos. Merismopedia glauca se presentó con fre-

cuencia (8 meses) pero con muy baja abun-

dancia.

Dinophyceae. Se destacó 3 especies de Peridr-

num, una de las cuales apareció durante todo

el ciclo, con máxima abundancia en marzo de

1976.

Chrysophyceae. Se registró Mallomonas, Stylococ-

cus y Dynobryon. Solo Dincbryon divergens fue

importante en esta laguna; estuvo presente

durante todo el ciclo alcanzando máximos en

septiembre-octubre de 1975 y entre febrero y

marzo de 1976.

Bacillariophyceae. Se identificó 32 taxa de los

cuales sólo dos son céntricas. De las 27 especies

de diatomeas citadas por Rivera (1970), no fue

posible detectar Cyclotella stelligera ni Melosira

talica.

Debe agregarse al fitoplancton de esta lagu-

na, las siguientes especies no registradas en

estudios anteriores: Eunotia flexuosa var. linea-

Punta Tumbes isla

Quiriquina

BAHIA CONCEPCIC

Lag.chic

Lag. Sn

rand

+ Pedro

GOLFO DE ARAUCO

739 15 432

ESCALA 1: 250.000

FIGURA 1

MAPA DE UBICACION

Fig. 1. Ubicación geográfica de los cuerpos de agua estudiados (señalados por las flechas).

150

100

Número de especies

0.0

LAG.LA POSADA

MN Cyanophyceae

Dinophyceae

EJ Chrysophyceae

Diatomeas

MM Euglenophyceae

ERB Desmidiaceae

28 Chlorophyceae (sin Desmidiaceae )

LAG. CHICA SN. PEDRO

LAG.LO MENDEZ

Fig. 2. Número total de especies de cada laguna por grupo taxonómico durante el período de muestreo.

ris, Navicula viridula var. avenacea, Gomphone-

ma parvulum, Cymbella gracilis, Cymbella cymbi-

formis, Nitzschia kuetzingiana, Hantzscha elonga-

ta y Stenopterobia intermedia.

Thomasson (1966) cita sólo a Melosira gra-

nulata y Surirella guatimalensis para esta lagu-

na. Melosira granulata fue la más importante

entre las diatomeas ya que fue registrada todo

el año, alcanzando valores apreciables en no-

viembre de 1975 y abril de 1976. Otras diato-

meas frecuentes en Laguna Chica de San Pe-

dro fueron Synedra ulna, Diploneis subovals,

Gyrosigma spenceri, Pinnularia latevitata fma.

medioconstricta, Pinnularia major var. transversa,

Cymbella lanceolata, Nitzschia kuetzngiana,

Hantzschia elongata, Stenopterobia intermedia,

Surirella robusta var. splendida.

Rivera (1970) señala que las diatomeas más

características de este lago serían: Surrella

guatimalensis, Melosira granulata, Melosira itali-

ca, Synedra ulna, Synedra rumpens var. familiaris

y Ceratoneis arcus; debe tenerse en cuenta que

las muestras analizadas por Rivera correspon-

dieron sólo a tres meses del año (octubre de

1964 y enero y abril de 1965).

Euglenophyceae. Sólo se detectó Phacus longr-

cauda en febrero y marzo de 1976.

Chlorophyceae. Se identificó 83 taxa; las desmi-

díaceas registraron el mayor número de espe-

cies (57 taxa). Sphaerocystis schroeteri y Botryo-

coccus braunt predominaron claramente. Las

siguientes fueron frecuentes pero cuantitati-

vamente poco importantes: Chlamydocapsa

planctonica, Oocystis lacustris, Quadrigula closte-

riovdes y Pediastrum angulosum. Entre las desmi-

diaceae destacaron por su frecuencia: Stauro-

desmus cuspidatus, Staurastrum rotula, Sphaero-

zosma aubertianum y Desmidium swartzi.

Thomasson (1963) cita a: Sphaerocystis

schroeteri (como Gloeococcus schroeteri), Chlamy-

docapsa planctonica (como Tetraspora lacustris),

Botryococcus brauni, Pediastrum boryanum y a las

desmidiaceas Xanthidium antilopaeum, Stauro-

desmus cuspidatus, Staurodesmus subulatus, Stau-

rastrum furcigerum, Staurastrum rotula var. smit-

hii y Sphaerozosma aubertianum, todas detecta-

das en el presente estudio. Thomasson (loc.

cit.) señala como “abundantes” en la muestra

de invierno a Dinobryon divergens y Botryococcus

braun.

Laguna La Posada

AGOSTO

1976

HARIAS

AAA

MARZO

197 6

FEBRERO

1976

AURA AAC ADA

arrasan oc o:

ENERO

1976

—

1975

E Dinophyceae

ID Euglenophyceae EHH Desmidiaceae

NOVIEMBRE DICIEMBRE

1975

OCTUBRE

1975

¿A

Saldadsa 3p 043WNN

E) Chrysophyceae HA Diatomeas

RR Chlorophyceae (sin Desmidiaceae )

A] Cyanophyceae

Fig. 3. Variación mensual del número de especies en cada laguna, por grupo taxonómico

LAGUNA LA POSADA

En esta laguna se detectó 250 taxa, número

que representa más del triple del encontrado

en Lo Méndez y el doble de Chica de San

Pedro. Los taxa se repartieron en: 16 Cyano-

phyceae, 4 Dinophyceae, 3 Chrysophyceae, 1

Xanthophyceae, 4 Euglenophyceae, 177

Chlorophyceae de las cuales 126 correspon-

dieron a Desmidiaceae.

Cyanophyceae. Gomphosphaeria lacustris y Micro-

cystis elachista fma. planctonica fueron frecuen-

tes y abundantes, aunque ninguna de las dos

se presentó durante todo el ciclo. Merismopedia

glauca y Anabaena solitaria fma. planctonica si-

guen en orden de importancia. Las especies

restantes fueron poco frecuentes.

Dinophyceae. De los 4 taxa registrados, sólo una

especie de Peridinium se mantuvo todo el ciclo

pero con valores cuantitativos bajos.

Chrysophyceae. Sólo tres especies representaron

a este grupo de las cuales son importantes

Dinobryon divergens que se mantuvo durante

todo el ciclo y Synura uvella presente entre

abril y octubre.

D. divergens alcanzó máximos en septiembre-

octubre de 1975 y en julio de 1976 y S. uvella

en septiembre de 1975 y julio de 1976.

-Xanthophyceae. El único representante del gru-

po fue Pseudostaurastrum gracile que persistió

durante ocho meses desapareciendo en in-

vierno.

Bacillarnophyceae. De 45 taxa sólo Melosira gra-

nulata representó a las céntricas y se presentó

en. 10 meses del año. Entre las penadas desta-

caron: Synedra radians, Diploners subovalis,

Stauroneis anceps fma. gracilis, Stauroneis phoen:-

centeron fma. gracilis, Navicula decussis, Navicu-

la viridula var. avenacea, Pinnularia major var.

linearis, Pinnularia substomatophora, Cymbella

cymbiformis, Cymbella gracilis, Cymbella lanceola-

ta, Stenopterobia intermedia, Nitzschía kuetzmgria-

na y Surtrella guatimalensis.

Rivera (1974) determinó 46 taxa indicando

que solamente Cymbella cymbiformis se presentó

durante todo el año. En el presente estudio se

observó también a C. cymbiformis durante todo

el ciclo, pero acompañada de Stenopterobia 1m-

termedia y Surirella guatimalensis. De los 46 taxa

señalados por Rivera, sólo 32 fueron detecta-

dos en la presente investigación. No se regis-

tró representantes de Fragillaria, Asterionella y

Rhopalodia.

Debe agregarse 12 taxa a la flora diatomo-

lógica de La Posada entre los que se destaca

Hantzscha elongata.

Euglenophyceae. Se detectó sólo 4 especies per-

tenecientes a Euglena, Phacus y Trachelomonas,

ninguna cuantitativamente importante.

Chlorophyceae. Al igual que en las lagunas ana-

lizadas anteriormente, este grupo incluyó el

mayor número de taxa (177); las desmidiaceae

fueron el grupo más diverso. El orden Volvo-

cales, estuvo representado por Eudorina, Pan-

dorina y Gontum, que fueron pocos significati-

vos. El orden Tetrasporales incluyó a Chlamy-

docapsa con C. planctonica presente gran parte

del año. Del orden Chlorococcales se registró

15 géneros y 31 especies entre las que se desta-

ca Sphaerocystis schroeteri, la especie dominante

del fitoplancton de esta laguna. Otras chloro-

coccales destacables por su frecuencia fueron:

Ankistrodesmus falcatus, Oocystis lacustris, Quadri-

gula closterioides, Dimorphococcus lunatus, Dic-

tyosphaertum pulchellum, Scenedesmus quadricau-

da, Pediastrum angulosum, Pediastrum duplex,

Coelastrum proboscideum. Los Ulothrichales y

Oedogoniales estuvieron representados por 4

y 1 géneros respectivamente, ninguno impor-

tante en Laguna La Posada.

Del orden Zignematales, la familia Desmi-

diaceae reunió al mayor número de especies

entre las cuales fueron más frecuentes: Gona-

tozygon monotaenium, Closterium kuetzangu, Cos-

maritum connatum, C. contractum, C. monomazum

var. polymazum, Xanthidium antilopaeum, Stauro-

desmus custidatus, Std. dejectus, dickiel, Std. exten-

sus, Std. mamillatus, Std. patens, Std. subulatus.

Std. tnangularis, Staurastrum curvimarginatum

St. furcigerum, St. gladiosum, St. gracile, St. laeve

St. polymorphum, St. rotula, St. striolatum, St

tohopekaligense, St. trifidum var. inflexum, Hya

lotheca dissiliens, Sphaerozosma aubertianum

Desmidium swartzil.

Parra (1975), citó 94 taxa para esta laguna,

24 de los cuales no fueron detectados. Deben

agregarse 53 nuevos taxa a la flora desmidio-

lógica de esta laguna, incluyendo a los géneros

Pentium y Arthrodesmus.

VARIACIONES CUANTITATIVAS DEL FITOPLANCTON TOTAL

POR GRUPOS TAXONOMICOS Y ESPECIES DOMINANTES

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

El fitoplancton total presentó cifras máximas

en primavera con incrementos de menor mag-

nitud a fines del período estival. Los máximos

se registraron siempre a 5 y 10 metros de

profundidad. (Figs. 4 y 5).

Las Chlorophyceae, además de constituir el

grupo con mayor número de especies, fue

también el de mayor abundancia en 11 de los

12 meses de muestreo. Sphaerocystis schroeteri y

Botryococcus braun concentraron el 90% de la

abundancia de las Chlorophyceae. Sólo en

septiembre y marzo (superficie y 5 metros)

fueron más abundantes las Chrysophyceae

debido a los valores alcanzados por Dinobryon

divergens.

Entre las Cyanophyceae solamente Gom-

phosphaeria lacustris y Microcystis elachista fma.

planctonica alcanzaron magnitudes significati-

vas en noviembre, julio y agosto.

Las Diatomeas presentaron mayor abun-

dancia entre mayo y agosto de 1976 sobre todo

por los valores alcanzados por las diatomeas

penadas. Melosira granulata, que manifestó

abundancia ligeramente superior a las otras

diatomeas, presentó máximos en octubre y

noviembre de 1976.

Las Dinophyceae fue el grupo de menor

incidencia cuantitativa. Peridintum, el único

género representado, presentó máximos en

octubre y noviembre.

En síntesis, en esta laguna y durante todo el

año, fueron más abundantes Sphaerocystis

schroeteri y Botryococcus braunt. Sólo en un mes

fue más abundante Dinobryon divergens. Otras

especies, características pero de menor inci-

dencia cuantitativa fueron: Gomphosphaeria la-

custris, Microcystas elachista £ma. planctonica, Me-

losira granulata, Surirella guatimalensis, Peridi-

num spp. y las Desmdiaceae,Desmidium swartza,

Staurastrum spp. y Staurodesmus spp.

LAGUNA LA POSADA

Esta laguna presentó las cifras más bajas de

fitoplancton total (Figs. 4 y 5) siempre con

valores superiores en las muestras de fondo

(37 veces superior en septiembre de 1975).

Como en Laguna Chica de San Pedro y a dife-

rencia de Lo Méndez, la proporción relativa

entre los grupos taxonómicos que integran

el plancton se mantuvo casi uniformemente

entre superficie y fondo.

En esta laguna predominaron las Chloro-

phyceae durante gran parte del año en térmi-

nos cualitativos y cuantitativos. Como en Chi-

ca de San Pedro, se verificó un predominio

marcado de Sphaerocystis schroeteri que fue la

especie más abundante entre noviembre de

1975 y agosto de 1976 (10 meses de los 12

analizados). En enero, febrero y marzo (1976)

repuntaron las Desmidiaceae. De esta familia

los siguientes géneros alcanzaron valores

apreciables: Staurodesmus, Staurastrum, Desmi-

dium, Sphaerozosma.

Las Chrysophyceae y las Cyanophyceae

fueron grupos cuantitativamente importan-

tes, aunque de menor relevancia que las Chlo-

rophyceae. Entre las Chrysophyceae destacó

Synura uvella que en septiembre de 1975, cons-

tituyó aproximadamente un 80% del fito-

plancton total. Parra et al. (1976) y Dellarossa

et al. (1976) establecieron que en julio y agosto

de 1975 predominó S. uvella, situación que se

repitió en la misma época en el año 1976 (Fig.

6) pues S. uvella apareció con valores muy

bajos respecto de Sphaerocystis schroeteri que

predominó durante este período. Dinobryon

divergens, otra Chrysophyceae, acompañó a S.

uvella y predominó en octubre de 1975.

Las Cyanophyceae, Microcystis elachista fma.

planctonica, Gomphosphaeria lacustris y Anabaena

solitaria fma. planctonica exhibieron gran

abundancia en noviembre (1975) enero y fe-

brero (1976) presentándose con abundancias

inferiores a Sphaerocystis schroeteri.

Las Diatomeas se presentaron con menor

proporción de abundancia respecto de los

otros grupos, que en los otros dos cuerpos de

agua objeto del presente estudio. La diversi-

dad específica, en cambio, fue alta y al igual

que en las otras dos lagunas, la diatomea más

abundante fue Melosira granulata. Además

aparecieron con frecuencia y cierta abundan-

cel/ Laguna Lo Mendez

4 x 106

— Om

--==5m

2 x 10%

1976

Laguna Chica de San Pedro

3 x10>

2 x 10%

1007

1975 1976

cel/l Laguna La Posada

PINE (05)

31:10?

2 x105

1975 1976

Fig. 4. Variación mensual del fitoplancton total (cel/l) en las profundidades

estudiadas.

cia especies de Surirella, Pinnularia, Navicula,

Gomphonema y Cymbella. En nimgún mes las

diatomeas fueron cuantitaivamente impotr-

tantes.

Las Dinophyceae fueron muy poco signifi-

cativas, excepto algunos meses (septiembre de

1975 y abril de 1976) en que aparecieron espe-

cies de Peridinium.

LAGUNA LO MENDEZ

El fitoplancton total presentó valores máxi-

mos en septiembre de 1975 y julio-agosto de

1976 (Figs.4 y 5).

Las diatomeas constituyeron el grupo cuan-

titativamente más importante presentando

claro predominio durante 7 meses en especial

Melosira granulata que alcanzó valores máxi-

mos en septiembre de 1975 (Fig. 6) y predomi-

nó en septiembre, octubre (1975), marzo,

abril, mayo, junio y julio (1976). Es decir, M.

granulata y por lo tanto las diatomeas como

grupo, disminuyeron en verano y parte de los

últimos meses de invierno. Otras diatomeas

cuantitativamente importantes fueron Synedra

radians y Synedra ulna siempre con valores muy

inferiores a los de Melosira granulata.

Las Cyanophyceae presentaron valores al-

tos en septiembre, octubre, noviembre, di-

ciembre (1975), enero y especialmente julio y

agosto (1976). Aphanizomenon flos-aquae mani-

festó entre septiembre (1975) enero (1976)

valores cercanos a los de Melosira granulata

sobrepasándola ampliamente en las muestras

de julio (superficie) y agosto (superficie y fon-

do). En este último mes se presentó acompa-

ñada de Microcystis aeruginosa, cianofita colo-

nial que alcanzó valores máximos en marzo,

abril y mayo de 1976, período en que las algas

azul-verdes no fueron cuantitativamente im-

portantes.

Las Dinophyceae alcanzaron cifras de im-

portancia en enero, febrero y marzo de 1976,

coincidiendo con la declinación de las diato-

meas (Melosira granulata). Este grupo llegó a

ser dominante sobre todo en aguas superficia-

les mediante una especie de Peridinium que

disminuyó en abril, cuando de nuevo comen-

zó a prevalecer Melosira granulata. En los me-

ses restantes Peridinium sp. fue cuantitativa-

mente poco significativo.

Aunque las Chlorophyceae no alcanzaron

valores cuantitativamente importantes en pro-

porción, se mantuvieron representadas du-

rante todo el ciclo, alcanzando alguna relevan-

cia en primavera y verano. Particularmente en

noviembre (1975) y febrero (1976), las Chlo-

rophyceae contribuyeron fundamentalmente

por el desarrollo de poblaciones de Scenedes-

mus y Pediastrum ($. acu minatus, S. quadricauda,

S. opoliensis, P. simplex y P. duplex). Entre las

Chlorophyceae también hay que destacar es-

pecialmente a las Desmidiaceae Staurastrum

chaetoceras y Closterium gracile que manifesta-

ron un interesante comportamiento estacio-

nal. La primera estuvo presente casi todo el

año con máximos en septiembre (1975) y julio-

agosto (1976). Closterium gracile alcanzó cifras

elevadas en junio, julio y agosto (1976), comci-

diendo con el comportamiento ya descrito pa-

ra esta época del año por Parra et al. (1976).

De las Chrysophyceae sólo un representan-

te de Mallomonas alcanzó, en la muestra de

diciembre (fondo), un valor de cierta rele-

vancia.

En síntesis, en el fitoplancton de Laguna Lo

Méndez se constató un predominio notorio de

Melosira granulata, Aphanizomenon flos-aquae y

Peridintum sp. acompañadas de Microcystis ae-

ruginosa, Synedra spp. Mallomonas spp., Scene-

desmus Spp., Pediastrum spp., Staurastrum chae-

toceras y Clostervum gracile.

TIPOS DE FITOPLANCTON

La sucesión que según Hutchinson (1967) es

posible constatar en un lago, en un ciclo anual,

puede ser descrita de acuerdo a la particular

combinación de especies dominantes y carac-

terísticas. Las primeras darían una idea gene-

ral del ordenamiento estructural en el fito-

plancton y de las características del biotopo en

el cual éste se presenta, mientras que las se-

gundas, más restringidas son más sensibles

que las dominantes a condiciones ambientales

particulares. Hutchinson (1967) propone un

sistema de clasificación de “tipos de fitoplanc-

ton”, cada uno de los cuales puede incluir

varias asociaciones reunidas en base a afinidad

taxonómica. Á continuación se describe el

comportamiento del fitoplancton de los cuer-

pos de agua en base a los tipos que fue posible

distinguir durante el ciclo de muestreo, de

metros

LAGUNA LO MENDEZ

JUNIO JULIO AGOSTO

SEPTIE'ABRE OCTUBRE NOVIEMBRE DICIEMBRE FEBRERO MARZO ABRIL

> 4.433.710 p > 624.985 P SP 7essee |] |SP» 351772

CA 7%)

ÉS ,

437939 1143426 B 255.420

3848557 » 4. 413569

Ye 2

1921280 1.239.996 954.776 825712

229,138 855513 e

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

394639 140.041 z Jl 102.754 Y 52.296

261.825 82797 206.309 294.254

103855 164.078 158.113

82.370 72.654

LAGUNA LA POSADA

E cyanophyceae ES Dinophyceae [E] Chrysophyceae [24 Diatomeas E Chlorophyceae

Fig. 5. Distribución vertical mensual del fitoplancton total y su composición porcentual por grupo taxonómico.

3 x10É

Melosira granulata (cel/lt)

0.0

ax10* Aphanizomenon, flos - aquae 3 Microcystis elachista

, (— fil/1t) 5x10 fma. planctonica

X ( -— het/It) [col/1t)

N 5x10% 7

A Sphaerocystis

0.0 e schroeterj

e y 00 (col /1t)

10x E Microcystis aeruginosa/(col / It ) 3 0.0

5x10 Dr: 2x10 Anabaena spp. ¡

ne (£i1/1t) 7x104 Botryococcus braunii (cel/It )

5x1 ee 0.0

Perid [cel LA

eridinium sp. (cel /1t) 210 Peridinium'spp

[cel /It)

7 0.0

0.0 0.0 10x10

3 Dinobryon divergens

+ ect omp les! Un 0 A Dinobryon divergens ¿ [ col/ 16

5x10% [col /1t) 5x10

0.0 0.0 ls

Scenedesmus spp. (cel/lt) 117614

Fs . 3 Gomphosphaeria lacustris

5x10 a A Synura uvella (cel/lt) sl (col/1t)

5x10

0.0 0.0 . z :

0.0 Microcystis elachista

10x10 2x10 fmg-—glanctonica

2x10 Melosira granulata (

: 0.0 col/It)

Pediastrum spp. (cel/It)

(cel/tt) an 4x102

5x10% Sphaerocystisfi schroeteri Peridinium sp.

(col/1t )

5d (cel /1t)

0.0 200% Gt granulata

4 Staurastrum sp. (cel/lt) 2 0.0 ad,

5x10 10x10 qe |

Desmidiaceae (cel/ lt) 3

5:10 x10

0.0 E ES 0.0 ÓN

SONDEFMAMJJl Ag SONDEF MA MJ Jl Ag

Laguna Lo Mendez

Desmidiaceae

(cel /1t)

INN

SONDEFMAMJ]J JlAg

Laguna La Posada

Laguna Chica San Pedro

Fig. 6. Variación del promedio mensual en la columna de agua, de los fitoplancteres dominantes y subdominantes en

cada laguna (cel = células; col = colonias; fil = filamentos; het

heterocistos).

acuerdo al sistema de Hutchinson antes men-

cionado.

LAGUNA CHICA DE SAN PEDRO

Durante 11 de los 12 meses controlados se

observó plancton correspondiente al tipo Bo-

tryococcus. En septiembre de 1975 el predom1-

nio de Dinobryon divergens determinó un tipo

Crisoficeo oligotrófico.

LAGUNA LA POSADA

En septiembre y octubre de 1975 el fitoplanc-

ton fue de tipo Crisoficeo oligotrófico predo-

minando en septiembre Synura uvella y en oc-

tubre Dinobryon divergens. En los meses restan-

tes la composición del fitoplancton no permite

asimilarlo con claridad a alguno de los tipos

del sistema de Hutchinson. Los que más se le

aproximan son el tipo Desmidiaceo oligotrófi-

co y el tipo Botryococcus. En el primero los

dominantes generalmente son especies de

Staurodesmus y Staurastrum y entre las algas

verdes asociadas puede encontrarse a Sphaero-

cystis schroeteri y Gloeocystis. Hutchinson (1967)

incluye en este tipo al fitoplancton de los lagos

Riñihue y Panguipulli del sur de Chile basán-

dose en los datos de Thomansson (1955). En el

tipo Botryococcus la dominante es B. braunu a la

que puede estar asociada Sphaerocystis.

El predominio que evidenció Sphaerocystas

schroeteri, acerca al fitoplancton de La Posada a

ambos tipos, pero no se detectó Botryococcus en

esta laguna y por otro lado aunque presentó

gran diversidad de especies de Staurastrum y

Staurodesmus, éstas no predominaron. De este

modo, la composición acerca al fitoplancton

más al tipo desmidiaceo oligotrófico pero las

relaciones de abundancia no corresponden a

las de este tipo.

LAGUNA LO MENDEZ

A pesar de los números altos que presentaron

las cianoficeas en septiembre y octubre de

1975, los valores que alcanzó Melosira granula-

ta permiten reconocer en estos dos meses un

tipo Diatomeo eutrófico. Este tipo se manifes-

tó claramente en noviembre de 1975. En di-

ciembre y enero el predominio de cianoficeas

indica un tipo Mixofíceo. En febrero y marzo

predominó el tipo Dinoflagelado eutrófico

con una especie de Peridinum como dominan-

te. Desde abril a junio de 1976 volvió a mani-

festarse el tipo Diatomeo eutrófico con predo-

minio de Melosira granulata. En julio y agosto

de 1976 se presentó nuevamente el tipo Mixo-

ficeo predominando Aphanizomenon flos-aquae

y Microcystis aeruginosa.

FLORACIONES DE MICROALGAS

Las Cyanophyceae constituyen una parte im-

portante de la biomasa presente en diversos

hábitats y su mayor relevancia se fundamenta

en la capacidad de fijar o almacenar nitró-

geno.

Entre los factores que determinan la abun-

dancia y sucesión de Cyanophyceae en el

plancton, se destaca como el de mayor consi-

deración la relación que existe entre este gru-

po y la presencia de nitrógeno.

En la actualidad existe suficiente informa-

ción para precisar que sólo algunas especies de

Cyanophyceae son capaces de fijar el nitróge-

no atmosférico. Otros factores que se relacio-

nan con la abundancia de este grupo en am-

bientes lénticos son: materia orgánica, con-

centración de fósforo, calcio, magnesio, sodio,

potasio, fierro, manganeso, pH y temperatura

de las aguas. (Pearsall, 1932; Gerloff et al.,

1950; Gerloff et Skoog, 1954; Prescott, 1948;

Ogawa et Carr, 1969; Hammer, 1964; Prova-

soli, 1964; Kúhnemann, 1966; Hutchinson,

1967).

En la periodicidad estacional del fitoplanc-

ton, la presencia exuberante de una pobla-

ción con características de floración origina

siempre interrogantes como: a) qué caracte-

rísticas presenta el sistema para posibilitar este

intenso crecimiento, b) cuál es el número ini-

cial de células presentes antes de la floración, y

c) cómo fluctúa la población, respecto a su

densidad, en función del tiempo.

Floración de Aphanizomenon flos-aquae

En Laguna Lo Méndez se detectó en forma

continua entre agosto (Parra el al. 1976) y no-

viembre de 1975, la presencia de heterocistos

de Nostocaceae; tal situación permitió postu-

lar que en algún momento futuro se debería

presentar un considerable aumento de una

población de cianófitas filamentosas en la co-

munidad. En noviembre del mismo año el

muestreo confirma la aparición de Aphanizo-

menon flos-aquae en niveles subsuperficiales de

este cuerpo de agua. La densidad de filamen-

tos en este momento alcanza ca. 500 til/ml. En

los meses siguientes y hasta mayo de 1976, la

población experimenta fluctuaciones en la

abundancia de filamentos tanto en superficie

como en los estratos más profundos.

Entre julio y agosto de 1976 se produce el

crecimiento explosivo de la población, repre-

sentando en este lapso sobre un 80% del nú-

mero total de células presentes por unidad de

volumen (Tabla II, Fig. 6) en la comunidad.

El rol que corresponde al heterocisto como

estructura reproductora ha tenido en el tiem-

po diferentes interpretaciones (Geitler, 1921;

Tabla III

ABUNDANCIA DE MICROCYSTIS AERUGINOSA Y

APHANIZOMENON FLOS-AQUAE EN LAGUNA LO

MENDEZ DURANTE UN CICLO ANUAL

*NXúmero de heterocistos

M. aeruginosa A. flos-aquae

Meses Prof. (m) col. /lt fi1./lt

1975

Septiembre 0 -- 2.098.700*

5 — 15.700%

Octubre 0 — 128.500%

5 - 4.000+

Noviembre 0 == 13.000*

5 — 412.800

Diciembre 0. 714 395.000

5 — 13.100

1976

Enero 0 — 191.400

5 = 501.400

Febrero 0 710 67.100

5 4.285 55.400

Marzo 0 1.428 =

5 10.000 10.000

Abril 0 4.642 5.000

5 8.571 15.700

Mayo 0 3.214 44.200

5 7.142 258.500

Junio 0 1.785 —

5 2.857 2.800

Julio 0 4.642 3.442.800

5 al Et

Agosto 0 — 3.960.700

5 18.571 1.485.700

Wolk, 1965). Este último autor asocia la ger-

minación del heterocisto con condiciones de

deficiencia en nitrógeno. En Laguna Lo Mén-

dez se corresponde con la abundancia de hete-

rocistos una baja en las concentraciones de Na

la forma de nitratos.

Otra estructura propia de muchas Cyano-

phyceae es la presencia de aquinetas o arthros-

poras (Komarek, 1958), cuya germinación es

facilitada por bajas concentraciones de fósto-

ro (Wolk, op. cit.). La eficiencia de la repro-

ducción asexuada mediante aquinetas es mu-

cho mayor que por heterocistos, y la ausencia

de estas últimas estructuras luego de la pre-

sencia de filamentos de A. flos-aquae en la co-

munidad nos permiten postular la existencia

en el tiempo de tres fases en el desarrollo de

este bloom:

a) La población de Aphanizomenon flos-aquae

soportaría la estación desfavorable median-

te células “reproductivas” aisladas, los hete-

rocistos (Parra et al. 1976).

b) La presencia inicial de filamentos de esta

especie sería producto de la germinación de

los heterocistos viables;

c) El exuberante crecimiento de la población

se debería a la multiplicación vegetativa de

los filamentos.

Floración de Microcystis aeruginosa

Referente a esta especie es posible señalar lo

a) Las estaciones menos favorables a su creci-

miento en el área estudiada son las de pri-

mavera y verano temprano, en que su pre-

sencia es localizada en los márgenes más

protegidos del cuerpo de agua, y detectán-

dose sólo colonias aisladas en aguas

abiertas;

b) El número inicial de células a partir del cual

se inicia el crecimiento intenso es producto

de la dispersión mecánica de las colonias

que perduran de la fase anterior, por la

acción de los vientos de otoño en el área;

c) El incremento de la población tanto en oto-

ño como en invierno se relaciona especial-

mente con características abióticas del siste-

ma, destacando el rol que las características

climáticas presentan en esta zona como son

abundancia de precipitaciones (ca. 1300

mm) y que confieren a las aguas un predo-

minio de iones sodio y cloruros por la proxi-

midad de esta laguna a la costa.

Floración de Melosira granulata

El predominio de diatomeas en todo cuerpo

de agua se asocia con las concentraciones de

sílice en el medio.

Melosira granulata está definida como una

diatomea cosmopolita, meroplanctónica y cla-

sificada por Lund (1954) como una especie

con alta demanda de luz y temperatura y que

puede sobrevivir en condiciones anaeróbicas

por medio de esporas de resistencia, que se

depositan en los fondos. Hustedt (1945) la

considera como una de las diatomeas planctó-

nicas más características de aguas eutróficas

de Europa. Dominancia de M. granulata ha

sido dada a conocer en numerosos trabajos;

Jolly (1959) la encontró dominando en el

plancton del lago Rotonda en casi todo el año y

con máximos en invierno y primavera equiva-

lentes a un 88 a 97% del fitoplacton total.

Existe una gran cantidad de información

respecto de los requerimientos de M. granula-

ta. Kilham (1971) establece que M. granulata

se encuentra en aguas con alto contenido de

sílice (sobre 5 ppm). La presencia de M. granu-

lata en aguas de menos de 1 ppm la explica

aceptando que sus poblaciones estarían sus-

pendidas por turbulencia en la columna de

agua, en momentos en que no hay suficiente

cantidad de nutrientes disponibles para el cre-

cimiento (Lund, 1954, 1955). En Danau Bra-

tan (Indonesia) M. granulata fue determinada

como la diatomea planctónica dominante

(Hustedt, 1938, 1939 y Ruttner, 1952) en mo-

mentos en que la concentración de sílice fue

de 1 ppm en todas las profundidades del lago.

Singh (1965, 1968) detectó a M. granulata en

un lago de bajo contenido de sílice cerca de

Delhi (India) en donde dominó durante todo

el año, pero la población creció significativa-

mente sólo cuando la concentración se elevó

hasta los 2 ppm. Lóeffler (1960) y Thomasson

(1963) observaron poblaciones extremada-

mente pequeñas de M. granulata, menos que

100 células por litro, en dos lagos chilenos que

contenían concentraciones de silicatos inferio-

res a 1,5 ppm.

En las tres lagunas analizadas las concentra-

ciones de sílice variaron en general entre 1 y 2

ppm, siendo bastante similares en las tres (De-

llarossa, Parra y Ugarte, publicación en pre-

paración). De ahí que resulta notable que sólo

en lo Méndez, M. granulata alcance valores

considerables, con cerca de un 90% del fito-

plancton total, manifestándose como la espe-

cie dominante en gran parte del año (Tabla

IV).

Acerca del comportamiento de M. granula-

ta y su relación con la concentración de sílice

en Lo Méndez, puede hacerse los siguientes

comentarios:

a) La población de M. granulata se detecta du-

rante todo el año y no se observó estados de

resistencia a condiciones desfavorables, por

lo que las fluctuaciones en número de célu-

las se pueden relacionar específicamente

con las concentraciones de sílice en el me-

dio, temperatura e interacción con otras

poblaciones;

b) El máximo de M. granulata (Tabla IV, Fig.

6) se produjo en septiembre de 1975 con

una concentración de silicatos de 2,28 ppm,

en superficie y de 2,9 ppm en profundidad;

además presentó un pique secundario en

abril de 1976 con concentraciones de silica-

tos de 1 ppm y 1,26 ppm en superficie y

fondo respectivamente. Esto no está de

acuerdo con los datos entregados por Kil-

ham (1971) quien establece que M. granula-

ta se desarrolla en concentraciones de silica-

tos entre 5 y 23 ppm y que cuando está

dominando la concentración óptima es de

13,4 ppm. Nuestras determinaciones indi-

can que el máximo de M. granulata se pro-

dujo con 2,9 ppm, por lo que se acercan más

a las de Hustedt (1938, 1939), Ruttner

(1952) y Singh (1965, 1968).

Entre los meses de octubre y noviembre, el

número de células por litro de Melosira granu-

lata disminuyó rápidamente a pesar de mante-

nerse constante la concentración de los silica-

tos. La explicación del descenso, debe enton-

ces buscarse en una causa ajena a la concentra-

ción de este nutriente. Por otro lado, además

de producirse la baja de M. granulata, entre

octubre y noviembre se verificó un incremen-

to en la población de Synedra sp. la que alcanzó

su máximo en diciembre (Tabla IV). Los altos

requerimientos de silicatos que presenta Syne-

Tabla IV

ABUNDANCIA DE MELOSIRA GRANULATA Y SYNEDRA SPP. Y CONCENTRACION

DE SILICATOS EN LAGUNA LO MENDEZ DURANTE UN CICLO ANUAL

M. granulata Silicatos Synedra spp

Meses Prof. (m) cel./ht ppm cel./ht

1975

Septiembre 0 2.162.285 2.28 63.571

5) 4.111.710 2.9 18.280

Octubre 0 116.210 2.05 5.210

5 982.857 2.01 26.857

Noviembre 0 256.420 1.91 37.000

5 433.710 2.54 26.000

Diciembre 0 59.280 < 0.002 104.280

5 93.714 0.048 53.142

1976

Enero 0 32.140 1.16 6.570

5 54.285 12M 24.285

Febrero 0 73.570 2.68 12.140

5 37.428 3.92 6.000

Marzo 0 233.214 1.94 1.428

5 435.714 2.00 22.857

Abril 0 433.571 1.00 1.428

5 1.144.142 1.26 45.714

Mayo 0 255.000 < 0.002 2.500

5 870.000 < 0.002 ZLESD

Junio 0 558.214 1.30 42.857

5 887.142 1.42 12.857

Julio 0 308.925 1.24 9.285

5 790.000 0.95 7.142

Agosto 0 350.000 213 13.214

Ly 125.714 2 LO, 15.714

dra (Richardson en Bradbury, 1973) explica-

rían entonces el agotamiento de los silicatos

verificado en diciembre. Posteriormente el in-

cremento en la concentración de los silicatos

conduciría a una recuperación, con máximo

en abril, de las poblaciones de Melosira y Syne-

dra, lo que a su vez se traduciría en la baja que

los silicatos experimentaron en mayo.

Una explicación del comportamiento de M.

granulata, en relación sólo a las concentracio-

nes de silicatos, puede conducir a interpreta-

ciones erróneas, siendo necesaria una mayor

información sobre las interacciones biológicas

de esta población.

CONC LU SPONES

1. La diversidad específica más alta correspon-

dió a laguna La Posada, para la cual fueron

registrados 250 taxa en el ciclo anual. Laguna

Chica de San Pedro presentó 131 taxa y Lagu-

na Lo Méndez 70.

2. Los valores más altos de abundancia en el

fitoplancton total correspondieron a Laguna

Lo Méndez y los más bajos a Laguna La Posa-

da. Cada cuerpo de agua presentó un patrón

diferente de repartición de abundancias entre

los grupos taxonómicos.

3. Laguna Chica de San Pedro presentó du-

rante 11 meses la asociación (Hutchinson,

1967) tipo Botryococcus y en el mes restante del

ciclo el tipo Crisoficeo oligotrófico dominado por

Dinobryon divergens.

El fitoplancton de Laguna La Posada no es

posible adscribirlo a alguna de las categorías

del sistema de Hutchinson (loc. cit.). Se apro-

xima a los tipos Desmidiaceo oligotrófico y Botryo-

coccus. Sólo en septiembre y.octubre de 1975

predominó el tipo Crisoficeo oligotrófico Carac-

terizado por Synura uvella y Dinobryon diver-

gens.

Laguna Lo Méndez presentó entre sep-

tiembre y noviembre de 1975 una asociación

tipo Diatomeo eutrófico con predominio de Me-

losira granulata que se manifestó nuevamente

entre abril y junio de 1976. En diciembre de

1975 y enero, julio y agosto de 1976 presentó

el tipo Mixoficeo con predominio de Aphanizo-

menon flos-aquae y Microcystis aeruginosa. En fe-

brero y marzo de 1976 presentó una asocia-

ción de tipo Dinoflagelado eutrófico en que pre-

dominó una especie de Peridinium.

4. Sólo en Laguna Lo Méndez fueron detecta-

dos crecimientos masivos con características

de floración (“bloom”). Presentaron este com-

portamiento dos Cyanophyceae: Macrocystas

aeruginosa y Aphanizomenon flos-aquae y una Ba-

cillariophyceae: Melosira granulata.

A. flos-aquae presentó fluctuaciones violen-

tas de densidad en la columna de agua; al

parecer el heterocisto desempeñaría un rol

determinante en este sentido. M. aeruginosa

aumentró en forma constante desde verano

tardío a invierno.

Las fluctuaciones de Melosira granulata pue-

den ser relacionadas con las variaciones en la

concentración de silicatos y con las fluctuacio-

nes experimentadas por las poblaciones de

Synedra.

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um conjunctivum

Lámina 1: 1. Planctomyces beckefii; 2. Euglena acus; 3. Phacus longicauda; 4. Dinobryon divergens; 5. Pseudostaurastrum gracile;

. Tetraedron minimum; 7. Elakatothrix gelatinosa y 8. Radiofl

A a 9

Lámina 2: 1 y 2. Crucigeniella aff. apiculata; 3. Crucigeniella rectangularis; 4. Quadrigula closterioides; 5. Kirchneniella lunans;

cystis schroeteri

Sphaero

6. Kirchneriella contorta; 7. Kirchneriella lunaris; 8. Kirchneriella obesa y 9.

Lámina 3: 1 - 3. Scenedesmus acuminatus; 4. Scenedesmus ovalternus; 5. Scenedesmus ecornis var. disciformis; 6. Scenedesmus

ecornis; 7. Scenedesmus thomassonii; 8. Scenedesmus quadricauda var. quadrispina y 9.Tetradesmus wisconsmensis

Lámina 4: 1 - 3. Scenedesmus opoliensis; 4. Scenedesmus quadricauda; 5. Scenedesmus opohensis; 6. Scenedesmus quadricauda; 7.

Scenedesmus opoliensis y 8 - 11.Scenedesmus quadricauda

Lámina 6: 1. Microcystis elachista £ma. planctonica; 2 y 3.Gomphosphaeria lacustris; 4. Gomphosphaeria lacustris y Microcystis

elachista fma. planctonica; 5. Merismopedia convoluta; 6 - 8. Microcystis aeruginosa y 9. Oscillatoria nigroviridis

Lámina 7: 1 - 3. Synura uvella; 4. Mallomonas sp.; 5. Trachelomonas sp.; 6. Trachelomonas sp. y 7 - 9. Peridinium sp.

NN ST Jl

ee od pen

RR a e

"QS,

5. Synedra ulna; 6.

splendida;

:4. Surirella robusta var.

3. Pinmularia major var. linearis

asis;

ymbella lanceolata

2. Surirella guatimaler

a8: ly

ámin

Sunrella biseriata; 7 y 8.C

'arians

avenacea y 10.Melosira

+ 9. Navicula viridula var.

Lámina 9: 1. Eudorina elegans; 2. Chlamydocapsa bacillus; 3. Sphaerocystis schroeteri; 4. Oocystis Sp.; 5. Sphaerocystis schroeteri y

6. Oocystis sp.

Lámina 10: 1. Geminella minor; 2 y 3. Radiofilum conjunctivum; 4. Coelastrum proboscideum; 5. Quadrigula closterivides; 6.

Dimorphococcus lunatus; 7. Nephrocytium sp.; 8. Dimorphococcus lunatus y 9. Micractintum pusillum

Lámina 11: 1. Scenedesmus quadricauda; 2. Scenedesmus acuminatus; 3 y 4. Scenedesmus opoliensis; 5. Scenedesmus brevispina; 6.

Pediastrum angulosum; 7 - 9. Pediastrum duplex y 10. Pediastrum angulosum

Ad a

Lámina 12: 1 - 5. Pediastrum simplex; 6. Pediastrum boryanum; y 7 y 8. Pediastrum sp.

Lámina 13: 1 y 2. Gonatozygon aculeatum; 3 y 4. Gonatozygon monotaentum; 5. Cosmartum moniliforme var. panduriforme; 6.

Micrasterias radiosa var. ornata fma. elegantior; 7. Micrasterias truncata; 8. Micrasterias radiosa var. ornata fma. elegantior; 9.

Cosmartum pseudoconnatum y 10. Cosmarrum cucumis

Lámina 14: 1. Staurastrum quadrangulare var. contectum; 2. Staurastrum gladiosum; 3 y 4. Staurastrum rotula; 5. Staurastrum

manfeldti var. annulatum; 6. Staurastrum avicula var. subarcuatum; 7. Staurastrum arcuatum:; 8. Staurastrum chaetoceras:; 9.

Staurastrum leptocladum; 10. Staurastrum bibrachiatum; 11. Staurastrum laeve; 12. Staurastrum tohopekaligense y 13. Stauras-

trum furcigerum

Lámina 15: 1. Staurodesmus dickiei; 2. Staurodesmus curvimarginatum; 3. Staurodesmus dejectus var. apiculatus; 4. Cosmarium

contractum; 5. Staurodesmus cuspidatus; 6 y 7. Staurodesmus subulatus; 8. Staurastrum curvimarginatum; 9. Staurastrum

orbiculare var. depressum; 10. Xanthidium antilopaeum; 1 1. Sphaerozosma laeve y 12 y 13.Sphaerozosma aubertianum

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORIAL UNIVERSITARIA S.A.,

EN EL.MES DE MAYO DE 1982

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

GAYANA uene por objeto dar a conocer las investigaciones

originales del personal científico de la Facultad de Ciencias Biológi-

cas y de Recursos Naturales de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una Zoológica

y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada Serie trabajos bioló-

gicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que los

números se publican tan pronto como la Comisión Editora recibe las

comunicaciones y su numeración es continuada dentro de cada

serie.

GAYANA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

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CASILLA 2407 APARTADO 10

CONCEPCION, CHILE

EDITORIAL UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

ISSN 0016-5301

A A NA

BOTANICA 1982 N* 37

EL GENERO FESTUCA (POACEAE) EN CHILE

THE GENUS FESTUCA (POACEAE) IN CHILE

OSCAR MATTHEI ]J.

)

BOTANICAL GARDEN

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

; ( CHILE |

ENS ELETUTO: DE BROBOGrxA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHTEE

EDITOR

Enrique Bay-Schmith B.

Oscar Matthei ]J.

Jorge N. Artigas C.

Lajos Biró B.

Miren Alberdi

Universidad Austral, Valdivia

Sergio Avaria

Depto. de Oceanología, Montemar

Nibaldo Bahamonde

Museo Nacional de Historia

Natural, Santiago

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Universidad de Chile, Santiago

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Universidad de Chile, Santiago

Hugo Campos

-Universidad Austral, Valdivia

Juan C. Castilla

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Universidad Austral, Valdivia

COMITE EDITOR

Clodomiro Marticorena P.

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Waldo Venegas S.

TECNICO

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Depto. de Oceanología

Universidad de Concepción

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Universidad Católica, Valparaíso

NNSTANA

BOTANICA 1982

EL GENERO FESTUCA (POACEAE) EN CHILE

THE GENUS FESTUCA (POACEAE) IN CHILE

OSCAR MAT THEI J.

UNIVERSIDAD DECONCEPCION

CHILE

o 37

“Los imfimitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chale, [: 14 (1848).

Impreso en

EDITORIAL UNIVERSITARIA

San Francisco 454

Santiago, Chile

INDICE

O AAA RA OT PORN A OA IRIS O

NAAA AO

AA A A e e o A A

Método y Material de Estudio

AA A A A

Distribución Geográfica

a e A AA

a AR A o

O EROTICA: + sa Bye one >» + <<<» + 3 E E

IS RETOMOTTCA DAA ss 0 2. e NS E A

AA AI A

Nfiaracteres de lalámina en corte transversal ......... ¿MUA

Ia tteres de la epiderms aDaSial .. 0:00 conos E ae ale

3. Clave para diferenciar las especies basada en la estructura de la epidermis

abaxial y caracteres anatómicos de la lámina ........0.. dd de

CAN A A il

Iomeciación de Festuca: CON SÉNETOS AÍINES .......ooomooocomonor aries ea

E e lNRENETO: ca Id ds ea CE le AA EN

Clave para la determinación de. las especies y descripción de las especies .....

EEES Excluidas ..... o... »..ó.- A e

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EL GENERO FESTUCA(POACEAE) EN CHILE

THE GENUS FESTUCA (POACEAE) IN CHILE

Oscar Matthel J.*

RESUMEN

Se estudian las especies del género Festuca (Poaceae) que

crecen en Chile. Se aceptan 28 especies para el país. Se

describe una nueva especie para la ciencia: F. morenensis

Matthei y se indican por primera vez como componentes

de la flora de Chile a las siguientes especies: F. kurtaana

St.-Y ves, F. tectoria St.-Y ves, F. nardifolia Griseb. y F. tenu-

folia Sibth.

Se describen e ilustran los caracteres morfológicos de

todas las especies y en base a ello se confecciona una clave

que permite su identificación. Se acompañan dibujos de la

epidermis abaxial de la lámina y anatomía de la misma

para todas las especies en corte transversal, teniendo pre-

sente estos caracteres se confecciona una clave que permi-

te identificar a la mayoría de las especies.

Se cita el material estudiado y se confecciona un mapa

en el cual se indica el área biogeográfica que ocupa cada

especie. Se señala a la pre y cordillera de los Andes como

el principal centro de distribución en el país y se destaca el

importante papel que las especies juegan en el sustento de

la fauna autóctona y ganadería extensiva.

IN TROD U

El género Festuca posee un número superior a

las 100 especies, su distribución es mundial,

encontrándosele en los lugares fríos o templa-

dos de la tierra.

Las primeras especies de este género des-

critas para nuestro país provenían del extre-

mo austral. A pesar de encontrarse esta región

alejada de los principales centros poblados del

mundo, el estudio de su flora y fauna se inició

desde muy temprano. Como ruta obligada de

los barcos europeos que se dirigían a las costas

SUMMARY

The especies of the genus Festuca (Poaceae) growing in

Chile are studied. 28 species are established as valid mem-

bers of this genus in Chile. A new species to science: F.

morenensis Matthei, is described, and F. kurtziana St.Y ves,

F. tectoria St.—Y ves, F. nardifolia Griseb. and F. tenuifolia

Sibth. are identified as components of the Chilean flora

for the first time.

Morphological characteristics are described and illus-

trated for all species, and a key on these characteristics for

species identification purposes is constructed. Drawings

of the abaxial epidermis and the anatomy in transversal

cuts of the lamina are provided, and a key based on these

drawings is made enabling identification of the majority

of the species studied.

The material studied is presented on a map to indicate

the biogeographical area inhabited by each species. The

Andean mountain Range and its foothills are pointed out

as the main center of distribution for the species in Chile.

Finally, the important feeding role which the species play

for native fauna as well as in large-scale livestock raising is

emphasized.

CCION

occidentales de América, se vio frecuente-

mente visitada por numerosas expediciones,

muchas de las cuales eran de carácter neta-

mente científico.

De este modo Commerson, al formar parte

de la segunda expedición francesa alrededor

del mundo, tiene la oportunidad de recolectar

en 1767 en Patagonia y Estrecho de Magalla-

nes. Parte de este material fue estudiado por

Lamarck, quien describió primero en 1788 a

F. magellanica y posteriormente en 1791 a F.

*Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Depto. Botánica. Universidad de Concepción. Concepción

Chile.

arenaria. F. magellanica, por lo tanto, fue la

primera especie del género Festuca descrita

para nuestro país, mientras que F. arenaria es

considerada en la actualidad como pertene-

ciente al género Poa.

No menos importante para el conocimiento

de nuestra flora fueron las expediciones ingle-

sas. J.R. y G. Forster, como integrantes de la

segunda expedición alrededor del mundo de

Cook (1772-1775), realizaron una buena co-

lección en Tierra del Fuego. De este material

describió Sprengel en su obra Plantarum minus

cognitarum pugilus secundus (1815) a Festuca

antarctica, en la actualidad un sinónimo de Poa

flabellata (Lam.) Raspail.

Posteriormente, J.D. Hooker (1847) botá-

nico de la expedición inglesa circumpolar an-

tartica comandada por el capitán J.C. Ross,

describió en su obra Flora Antarctica, las si-

guientes especies para nuestro país: F. fuegia-

na, F. arundo, F. purpurascens y F. gracillima. De

estas especies las dos primeras han sido trans-

feridas al género Poa y las dos últimas son

consideradas buenas especies del género.

Gay (1854) quien tuvo la oportunidad de

realizar una exhaustiva recolección de gran

parte de nuestra flora, encomienda a E. Des-

vaux el estudio del material colectado de la

familia Poaceae. Este es el primer trabajo que

incluye todas las especies conocidas hasta ese

momento para nuestro país, 12 en total. De

éstas, 3 son nuevas especies: F. tunicata, F.

acanthophylla y F. ervolepis. Las dos primeras se

consideran hasta el: presente como especies

válidas, mientras que F.. eriolepis ha sido trans-

ferida al género Vulpia.

Steudel (1854) en poder del material que

colectaron en Chile, los naturalistas Bertero,

Poeppig y Lechler, describió 8 nuevas espe-

cies. De este elevado número: F. berteroniana,

F. coiron, F. insularis, F. lechleriana y F. platyphy-

lla son sólo nuevos nombres para especies del

género Festuca previamente descritas. De las

especies restantes, F. biflora fue transferida

por Parodi (1937) al género Puccinellia y F

antucensis (Trin.) Steud. conjuntamente con F.

commutada Steud. se consideran pertenecien-

tes al género Vulpia.

R.A. Philippi es el autor que mayor número

de especies describió para nuestro país, en

total 23, de las cuales sólo 6 se reconocen como

válidas en el presente trabajo.

Las primeras especies para este género las

describió Philippi en la revista Linnaea (1857):

F. robusta, F. laxiflora y F. scabriuscula. Sólo F.

scabriuscula se considera en la actualidad como

especie válida.

En 1860 describió Philippi en Florula Ataca-

mensis a F. deserticola y en 1862 en los Anales de

la Universidad de Chile a F. thermarum, ambas

consideradas como buenas especies. En 1864,

nuevamente en Linnaea describió 4 especies:

F. cepacea, transferida por Nicora (1973) al

género Bromelica, F. asperata un sinónimo de F.

tumicata, F. desvauxú sinónimo de F. acanthophy-

lla y por último F. dumetorum, previamente

descrita como F. purpurascens.

Posteriormente, en los Anales de la Universi-

dad de Chile, 1873 describió a F. monticola, una

buena especie para nuestra Flora.

En su obra sobre la flora de Antofagasta y

Tarapacá agrega Philippi (1891) cuatro nue-

vas especies para este género: F. chrysophylla,

F. hypsophila, F. paupera y F. juncea, de éstas

sólo las dos primeras se consideran como espe-

cies válidas.

Por último en 1896 y a la avanzada edad de

88 años describió 9 especies, de las que se

indica a continuación en forma abreviada el

nombre dado por el autor y la especie o géne-

ro a la cual debe ser transferida:

Festuca acuta Phil. — F. acanthophylla

F. davilae Phil. — F. purpurascens

F, glaucophylla Phil. — F. purpurascens

F. serrano: Phil. — F. purpurascens

F. pascua Phil. — F. scabriuscula

F. subandina Phil. — F. scabriuscula

F. steudela Phil. — F. scabriuscula

F. spamantha Phil. — Poa sp.

F. pataginica Phil. — Poa sp.

Durante los años 1882-83, se llevó a efecto

la expedición francesa de la Romanche desti-

nada a realizar un detallado estudio de la par-

te austral de nuestro continente. Los resulta-

dos botánicos fueron publicados en el tomo 5

de la obra: Misión Scientifique du Cap Horn.

Aquí describió Franchet (1889) a F. pogonanl-

ha y F. commersonii. La primera según Parodi

pertenece al género Poa y la segunda un sinó-

nimo de F. thermarum.

Hackel (1906) describió a F. elliotii, especie

que corresponde a Poa. Posteriormente este

mismo autor en Druce, Bot. Soc. Exch. Club. Brit.

Isles le confirió a F. dumetorum Phil. un nuevo

nombre, por haber sido usado éste previa-

mente, denominándola F. trachylepis, un sinó-

nimo de F. purpurascens.

Saint-Y ves (1927) con su estudio de las Eu-

festucas de América del Sur publicado en Can-

dolia, es el autor que más ha cont:ibuido al

esclarecimiento de la sistemática de las espe-

cies chilenas. Indicó para ellas sus característi-

cas anatómicas y aportó una clave para su

identificación. Describió para Chile las espe-

cies F. werdermannúu, especie del Norte de

nuestro país y F. caullieri, previamente ya des-

crita y conocida como F. argentina (Speg.) Pa-

rodi. De interés por encontrarse también en

nuestra flora son F. kurtziana descrita original-

mente para Argentina y F. tectoria descrita pa-

ra Perú. Ambas se citan en el presente trabajo

por primera vez para nuestro país. Además,

creó Saint-Yves nuevas subespecies, varieda-

des y subvariedades las cuales desafortunada-

mente no siempre fueron creaciones afortu-

nadas. Colocó a F. platyphylla Steud. como va-

riedad de F. purpurascens. En el presente tra-

bajo no se reconocen variedades para esta es-

pecie. También indicó para Chile la presencia

de F. ovina subordinada a F. magellanica como

subespecie de ella, reconociendo a su vez va-

riedades y subvariedades. A pesar de ser espe-

cies muy afines, se estima en la presente revi-

sión que ambas deben mantener su rango es-

pecífico. Del mismo modo ubicó a F. monticola

como variedad de F. gracillima y a F. scabriuscu-

la inicialmente como variedad de F. robusta y

posteriormente como sinónimo de F. neuquen-

sis variedad aspera. Para ambas (F. monticola y

F. thermarum) se mantiene, como ya se indicó,

su nivel específico. Por último, ubicó como

variedades de F. deserticola a F. chrysophylla, F.

juncea, F. hypsophila y F. paupera. Esto no es

aceptable, sobre todo teniendo en cuenta las

características anatómicas de la lámina, por lo

que deben mantener su nivel específico F.

chrysophylla y F. hypsophala.

Con posterioridad a Saint-Yves y excep-

tuando la valiosa contribución de Parodi

| (1953), no se habían realizado hasta el presen-

te, nuevos intentos por hacer un estudio glo-

bal de nuestras especies. Swallen (1936) descu-

brió para la alta cordillera andina a F. panda.

Muñoz (1948)describió para la provincia de

Coquimbo a F. barraza, un sinónimo de F.

tunicata y Potztal (1959)descubrió para Tierra

del Fuego a F. magensiana, una especie muy

afin a F. magellanica.

Parodi (1953) en su revisión de las especies

de Festuca de la Patagonia hizo un importante

aporte al estudio de las especies de esta región.

Describió a F. longidiurna, un sinónimo de F.

cirrosa y restituyó el nivel específico para F.

pyrogea, que previamente Hackel (1906) había

considerado como variedad de F. ovina. Del

mismo modo a F. pallescens le reconoció el

nivel específico. Previamente había sido consi-

derada como subvariedad de F. gracillima. Por

último a F. commersona le confiere el nuevo

nombre de F. subantarctica un sinónimo de F.

thermarum.

Además de las especies antes señaladas hay

que agregar también a aquellas que no fueron

descritas originalmente para nuestro país. Al-

gunas de ellas ya se les consideraba antes de la

presente revisión como integrantes de nuestra

flora, mientras que a otras se les cita por pri-

mera vez.

Dumont d'Urville (1825) describió a F. erec-

ta para las Islas Malvinas y que Parodi (1953:

189) había ya citado para Chile. Este nombre

está invalidado por existir un homónimo ante-

rior, debiendo por lo tanto referirse a esta

especie como F. contracta Kirk.

Grisebach (1879) describió para el Norte de

Argentina a F. nardifolia, especie que se cita

por primera vez para la cordillera de Arica.

Pilger (1898) describió para la Puna de Pe-

rú y Argentina a F. orthophylla, especie que

también es un componente importante en la

vegetación de la alta puna de Chile.

También existen especies que han sido in-

troducidas, unas como forrajeras, para las

praderas artificiales de la zona central del país,

como es el caso de F. arundinacea y otras, para

prados y céspedes como posiblemente sucedió

con F. rubra. Por último existe también la posi-

bilidad que algunas hayan llegado mezcladas

junto a otras semillas como posiblemente fue

el caso de F. tenuafolra y F. juncifolia y que ahora

crecen en forma espontánea.

Interesante ha sido el descubrimiento de

una nueva especie para el Norte de nuesto

país: Festuca morenensis, que es la única repre-

sentante de este género que habita esta región

en las cercanías del mar.

Se desprende de esta exposición que, para

Chile se habían descrito una infinidad de es-

pecies, un número superior a 50, número arti-

ficial que no guarda relación con el real tama-

ño del género en Chile. Esta enorme cantidad

de descripciones, lo incompleta que eran mu-

chas de ellas y la dificultad para ubicar su

respectiva bibliografía, eran obstáculos im-

franqueables para todo botánico que intenta-

ba determinar una especie de este género.

METODOS Y

Además de los métodos clásicos de determina-

ción basados en los órganos florales y vegetati-

vos, se usaron las características anatómicas de

la lámina y caracteres de la epidermis abaxial

de la misma. Sus respectivas preparaciones se

confeccionaron a partir de pequeños trocitos

(2-3 mm), cortados en la mitad de la penúltima

hoja del brote vegetativo. En la confección de

los cortes anatómicos se usó la misma técnica

de trabajos anteriores (Matthei 1965). Para

realizar las observaciones de la epidermis se

siguió estrictamente a Metcalfe (1960).

En lo referente a la sinonimia, ésta se agru-

pó teniendo presente al ejemplar tipo que dio

origen al sinónimo. Es así como todos los sinó-

nimos basados en un mismo tipo forman un

solo grupo, los cuales se han agrupado a su vez

en orden cronológico. Las abreviaciones de

revistas se hicieron conforme a Lawrence

(1968). Con la intención de indicar la fecha

exacta de publicación de los diferentes tra-

bajos, se consultaron las obras de Stafleu

(1967) y Stafleu £e Cowan (1976, 1979).

Gran parte del material estudiado corres-

ponde al herbario de la Universidad de Con-

cepción (CONC.). Además se tuvo la oportu-

nidad de consultar a los siguientes herbarios:

La presente revisión, en la cual se recono-

cen 28 especies, todas ellas profusamente ilus-

tradas y que incluye, no sólo caracteres morfo-

lógicos, sino que también anatómicos, permiti-

rá identificar con cierta facilidad las especies

de este género, primer paso para conocer su

real participación en la composición florística

de nuestra vegetación. Agregando el presente

trabajo a las revisiones del género realizadas

por Túrpe (1969) y Nicora (1978) para Argen-

tina y por Tovar (1972) para Perú, permitirá

una visión más exacta de la verdadera dimen-

sión que este género posee en la flora sudame-

ricana.

MAL DE R LAS DE ES EU DILO

B. Botanisches Museum. Berlin-Dahlem. Ber-

lín. Alemania Occidental.

BHU. Bereich Botanik und Arboretum des

Museums fúr Naturkunde. DDR. Alema-

nia Oriental.

HIP. Instituto de la Patagonia. Punta Arenas.

Chile

LOOSER. Herbario particular de Gualterio

Looser hoy en Ginebra.

MONTERO. Herbario particular de Gilberto

Montero. Temuco. Chile.

M. Múnchen. Botanische Staatssammlung.

Alemania Occidental.

MB. Marburg. Botanisches Institut. Alemania

Occidental.

P. Paris. Muséum National d' Histoire Nature-

lle. Laboratoire de Phanérogamie. Francia.

SGO. Santiago, Museo Nacional de Historia

Natural. Chile.

VALPARAISO. Depto. de Biología. Universi-

dad de Valparaíso. Chile.

W. Viena. Naturhistorisches Museum. Aus-

tria.

AGRADECIMIENTOS

El presente estudio fue posible gracias a una

beca de la Fundación Alexander von Hum-

boldt de Alemania Occidental, la cual permi-

tió la consulta de gran parte del material origi-

nal. No menos importante fueron las facilida-

des otorgadas por el Museo Botánico de Ber-

lin-Dahlen que puso a disposición su enorme

biblioteca. Nuestra Universidad, por interme-

dio de la Dirección de Investigación, aportó

los medios para incrementar las colecciones, lo

cual facilitó enormemente la confección de la

distribución de cada especie.

Fundamental para la realización del pre-

sente trabajo fue la posibilidad de contar con

un representativo material de herbario, a los

curadores o dueños de éstos se les agradece las

facilidades otorgadas.

Se desea agradecer además a Edda Kretzs-

chmer por la confección de las preparaciones

anatómicas y a Fernando Calvo y Nelson Moya

por la realización de los dibujos. Reciban ellos

por tan esmerada participación nuestros pro-

fundos agradecimientos.

DISTRIBUCION"GEOGRAFTCA

Las especies del género Festuca habitan en

Chile una extensa área que se extiende princi-

palmente a lo largo de la cordillera de los

Andes, desde el límite norte del país (177 30" S)

hasta Cabo de Hornos (565).

Esta enorme distribución, en gran medida,

se explica por la presencia de un clima homo-

géneo y que fundamentalmente está caracteri-

zado por la presencia de bajas temperaturas

durante largos períodos del año. Estas son

determinadas, por la altura en la parte norte

del país y por la latitud, en la parte sur.

Las temperaturas bajas, a menudo inferio-

res a cero grado, dificultan la economía hídri-

ca de la planta, lo que agregado a la escasa

pluviometría en los meses de verano inciden

en la formación de un hábitat de característl-

cas áridas, que imposibilita la subsistencia a

muchos vegetales. La gran mayoría de las es-

pecies del género Festuca se han adaptado exi-

tosamente a estas condiciones, desempeñando

un papel importante en la composición florís-

tica de estas regiones. Ellas ocupan áreas bien

delimitadas, las cuales en gran medida coinci-

den con las zonas biogeográficas descritas por

Fuenzalida y Pisano (1965: 228-267) y Pisano

(1966: 62-73). Siguiendo esta clasificación las

especies en estudio se reúnen en las 4 zonas

biogeográficas consideradas por los autores

antes señalados. A su vez para cada una de

estas zonas se indican las formaciones en las

cuales se ha encontrado la presencia del géne-

ro en estudio. Con la intención de que el lector

se forme un cuadro más real del hábitat de

estas especies se ha estimado conveniente en-

tregar las características climáticas, obtenidas

de Fuenzalida (1965: 99-151). Desgraciada-

mente no existen datos climáticos para todas

las formaciones, lo cual habría sido útil para

poder señalar las relaciones existentes entre el

medio y las carácterísticas foliares de las espe-

cies analizadas.

Una visión global de esta distribución se

puede apreciar en los mapas respectivos (Fig.

1 y Fig. 2) los cuales resumen la distribución

que a continuación se presenta.

Il. ZONA XEROMORFICA

De acuerdo a los autores antes citados, esta

zona se extiende desde el extremo norte del

país hasta el río Limarí. Debido a que, nume-

rosas especies sobrepasan levemente este lími-

te austral se ha estimado conveniente exten-

derlo, de tal modo que no sólo incluya una

parte, sino que la totalidad de la 111 Región.

Por lo to tanto, esta zona comprende las actua-

les regiones I, II y IT. Encontramos aquí a las

siguientes especies: Festuca orthophylla, F. chry-

sophylla, F. deserticola, F. hypsophila, F. nardifo-

ha A Y

ISK

LEYENDA 1

1- F. tunicata TA Estepa andina

2- F. acanthophylla ESE olar

3-F. kurtziana DAPR Desierto costero

4.-F. panda

6 Matorral de los sal >

5.- F. werdermanni! E 2 np le

6-F. orthophylla EEE matorral costero rico en plantas anuales

7-F. deserticola Estepa Acacia caven

8.-F. tectoria Mov) Estepa costera

78 po > Matorral costero arborescente

HA SS Formación xeromórtica andina

- F.morenensis

- F. chrysophylla Bosque abierto andino sin coniferas

-F. thermarum AAA atorral preandino de hojas lauriformes

- F. magellanica MUbraL. ap n

15-F. scabriuscula

Fig. 1. Distribución geográfica de las especies del género Festuca en Chile, con indicación de la formación en que

se ubican las especies.

LEYENDA Il

Matorral de transición

Selva valdiviana de la costa

Formación de Nothotagus obliqua y

Laurelia sempervirens

ES Selva valdiviane andina

Selva de Chiloé

Estepa patagónica

Tundra magellanica

- F, thermarum

magellanica

.scabriuscula

.contracta

,pallescens

- F, argentina

-F, purpurascens

.gracillima

-F.pyrogea

-F cirrosa

-F, magensiana

,monticola

Fig. 2. Idem Fig. 1.

lia, F. tectoria, F. werdermannu y F. morenensis,

las cuales habitan las formaciones que a conti-

nuación se señalan:

Formación estepa-andina

Comprende esta formación un piso altudinal

entre los 3.500-4.000 m de altura, rango de

variación que puede diferir en ciertos lugares

desde 3.000 a 4.600 m.s.m. El clima en la parte

norte de esta formación está caracterizado por

la presencia de precipitaciones de verano, que

combinadas con las temperaturas propias de

la altitud, logran crear las condiciones necesa-

rias para el desarrollo de la estepa. Más al sur

se observa, que las precipitaciones se presen-

tan durante todo el año, pero su monto dismi-

nuye, no alcanzando a proveer el suelo de

humedad suficiente para el desarrollo de su

vegetación. En este ambiente y a menudo cu-

briendo grandes extensiones se presenta /-.

orthophylla y E. cloysophylla. Creciendo en for-

ma menos abundante y sólo en arenas húme-

das se encuentra E. nardifolia. En la parte sur

de esta formación la presencia de estas espe-

cles se torna cada vez más escasa. En aquellos

lugares donde la humedad es abundante, lo

cual acontece en las cercanías de arroyos o

vertientes, se desarrolla F. hypsophila, F. deserti-

cola y E. werdermanma.

Formación tolar

A menor altura y colindando con la formación

antes descrita se ubica el tolar, el que debido

principalmente a la presencia de temperatu-

ras más benignas que en la formación ante-

rior, permite el desarrollo, en las quebradas

más profundas de una vegetación arbustiva,

bajo cuya protección esta F. tectoria.

Matorral de los salares

Solamente a orillas de arroyos y de salares

crece F. deserticola, planta capaz de soportar

altas concentraciones de sales.

Desierto costero

Esta formación se extiende a lo largo de la

costa del país, desde el límite norte, hasta

aproximadamente los 2820” lat. sur. Com-

prende sólo una angosta faja de terreno carac-

terizada por una permanente alta nubosidad y

por temperaturas bajas homogéneas. Hasta el

momento y sólo para el Morro Moreno se ha

colectado una especie que se describe como

Festuca morenensis. Esta es la única especie que

en la zona xeromórfica crece en las cercanías

del mar.

2. ZONA MESOMORFICA

Teniendo presente las modificaciones intro-

ducidas para el límite austral de la zona descri-

ta anteriormente, ésta comprende las regiones

IV, V, VI, Area Metropolitana, VII y parte de

la VII Región. Las especies que habitan esta

zona son las siguientes: F. acanthophylla, F.

arundinacea, F. kurtziana, F. magellanica, F. pan-

da, F. scabriuscula, F. thermarum, EF. tunicata, F.

werdermannt.

Formación estepa-andina

Esta formación que nace en la zona xeromór-

fica se prolonga a lo largo de la cordillera

andina hasta los 31? lat. sur. Sus características

fueron ya descritas. Ubicamos aquí a F. panda,

F. werdermanma, F. acanthophylla y F. magella-

nica.

Formación xeromórfica andina.

Se le considera como una continuación de la

formación de estepa andina ubicada a altitu-

des que varían entre 2.000 y 4.000 m.s.m. Se

caracteriza por el marcado xerofitismo origl-

nado por las bajas temperaturas existentes du-

rante la mayor parte del día. Abundantes en

esta formación son F. acathophylla y F. kurtziana

las que a menudo cubren grandes extensio-

nes. Creciendo en forma aislada están F. tuni-

cata y F. magellanica.

F. acanthophylla aparece excepcionalmente

también en la cordillera de la Costa, Cerro

Imán, Quillota. Sin lugar a dudas la elevación

de este cerro, 2.000 m.s.m. determinan las

condiciones apropiadas para el desarrollo de

esta especie.

En las formaciones que a continuación se

indican: Matorral costero de plantas anuales;

Tolar; Estepa costera, Matorral costero arbo-

rescente, Estepa Acacia caven y Matorral es-

pinoso subandino crece en todas ellas F. tuni-

cata. Esta es la única especie capaz de crecer en

formaciones de Chile central que van desde la

costa hasta la cordillera de los Andes, indican-

do con ello, una enorme capacidad de adapta-

ción.

Formación bosque abierto sin coníferas

Entre los 600 y 1.200 m.s.m. se desarrolla un

bosque mixto en el cual especies caducifolias

del género Nothofagus se presentan formando

asociaciones importantes. En el límite alutudi-

nal de esta formación están F. scabriuscula y EF.

thermarum, frecuentes especialmente en los

claros que dejan los árboles de N. obliqua y N.

pumiho.

Formación preandina de hojas lauriformes

Las pendientes más inferiores de los Andes,

presentan en esta zona una formación de un

carácter abiertamente mesofítico. Cuyo aspec-

to es el de un matorral que en las quebradas es

suplantado por una asociación de árboles

siempre verdes. En los espacios abiertos del

matorral se ubican F. acanthophylla, F. kurtz1a-

na, F. thermarum y E. scabriuscula.

En todo el valle central, especialmente en

praderas artificiales de riego, se cultiva a F.

arundinacea, especie que a menudo se observa

creciendo en forma espontánea.

3. ZONA HIGROMORFICA

Abarca desde el límite sur de la Zona Meso-

mórfica, es decir aproximadamente desde

37%S, hasta las Islas del Archipiélago de Cabo

de Hornos, cubriendo el territorio compren-

dido desde el océano Pacífico hasta la cordille-

ra de los Andes. La superficie que se extiende

al lado este de la cordillera de los Andes se

describe posteriormente bajo Zona Xeromór-

fica Patagónica. Habitan la zona Higromórti-

ca: F. scabriuscula, F. thermarum, EF. purpuras-

cens, EF. cirrosa, F. contracta, FE. monticola.

A pesar que esta zona se caracteriza por una

alta disponibilidad de agua, existen lugares en

que ella es escasa, desarrollándose consecuen-

temente una vegetación con características xe-

rofíticas. Por efecto de la cordillera de

Nahuelbuta, al no permitir la penetración al

continente de los vientos cargados de hume-

dad, se extiende inmediatamente detrás de

ella, es decir el lado este y sureste, una amplia

extensión de características mesofíticas.

Formación matorral de transición

Como su nombre lo indica, en esta formación

predominan matorrales constituidos predo-

minantemente por arbustos. Junto a ellos en-

contramos a F. scabruuscula.

Formación Nothofagus obliqua y Laurelia

sempervirens

Este grupo vegetacional se distribuye en el

valle central del país, cobijando en los lugares

más secos a F. scabriuscula, en tanto que en los

lugares más humedos se desarrolla F. purpu-

rascens.

Formación selva valdiviana andina

Se extiende por sobre la formación anterior a

lo largo de la cordillera de los Andes. Sus

componentes principales son árboles siempre

verdes y de hojas caedizas. En aquellos lugares

en los cuales estos árboles no forman un dosel

tupido crecen F. scabriuscula y F. thermarum.

Formación selva valdiviana de la costa

Esta formación se diferencia de la anterior por

ser más húmeda. En los claros que deja este

espeso bosque se encuentra F. purpurascens.

En áreas muy restringidas, ubicadas en la par-

te más alta de la cordillera de Nahuelbuta

(Prov. Malleco) y cordillera Pelada (Prov. Val-

divia) se presenta F. monticola, que en los luga-

res más humedos, forma grandes matas. En

gran medida, el ambiente reinante en estos

lugares asemeja la formación tundra magella-

nica.

Formación selva de Chiloé

A continuación de la selva valdiviana de la

costa, se extiende la formación selva de Chi-

loé, caracterizada por una abundante pluvio-

sidad. En los lugares despejados del bosque se

encuentra F. purpurascens.

Formación tundra magellanica.

En la parte oeste de nuestro territorio austral

se ubica esta formación la que destaca por las

bajas temperaturas reinantes durante todo el

año y por una notoria falta de drenaje. F.

thermarum, F. cirrosa, F. purpurascens y F. con-

tracta crecen en este hábitat, mientras que f.

gracillima y F. magellanica lo hacen en los luga-

res más secos junto al límite con la estepa ma-

gellanica.

4. ZONA XEROMORFICA PATAGONICA

Esta zona, se extiende al este de la cordillera

de los Andes y cubre un área discontinua. La

primera parte de ésta se ubica aproximada-

mente, entre las latitudes 44?15' a 4445" apro-

ximadamente, y luego en el sur, desde más o

menos 50%40" a 5420" latitud sur. Posee un

clima que permite la formación de una estepa,

debido a la disminución paulatina de las llu-

vias, producida por el alejamiento de la cordi-

llera de los Andes y al aumento de la oposición

térmica entre los meses extremos del año.

Los pastos son elementos importantes de

esta formación, en especial las especies del

género Festuca. Densas asociaciones forman F.

magellanica, F. pyrogea y F. gracillima. Estas jue-

gan un rol importante ya que a menudo es la

principal integrante de los “coironales”. Me-

nos frecuente, pero ocupando los mismos lu-

gares que las anteriores es F. magensiana. En

las partes húmedas, en especial a orillas de

esteros y vegas F. pallescens forma densas aso-

CAR AC TE RES

1. CARACTERES DE LA LAMINA EN CORTE

| TRANSVERSAL

En corte transversal las láminas se caracterl-

zan por poseer 5-28 haces conductores. En su

cara adaxial poseen costillas bien pronuncia-

das, su cara abaxial, en tanto, es lisa o ligera-

mente ondulada. En su contorno las láminas

pueden ser aquilladas, redondeadas, elípticas

o planas.

Poseen un contorno aquillado: F. magensia-

na (Fig. 12:E), F. magellanica (Fig. 13:E), F.

pyrogea (Fig. 10:E), F. ovina, F. gracillima (Fig.

12:D), F. werdermannú (Fig. 11:E), F. rubra

(Fig. 10:A), F. contracta (Fig. 18:C), F. kurtzana

(Big. 17D).

Un contorno redondeado o elíptico lo po-

seen: F. deserticola (Fig. 18:D), F. panda (Fig.

14:D), F. tenuifolia (Fig. 12:F), F. cirrosa (Fig.

22:C), F. scabriuscula (Fig. 24:B), F. thermarum

(Fig. 24:G), F. monticola (Fig. 24:D), F. more-

nensis (Fig. 24:A), F. acanthophylla (Fig. 23:E),

F. pallescens (Fig. 19:B), F. tunicata (Fig. 22:E),

F. hypsophila (Fig. 20:C), F. argentina (Fig.

21:B), F. chrysophylla (Fig. 16:C), F. orthophylla

(Fig. 11:B) y F. juncifolía (Fig. 10:C), F. nardafo-

lía (Fig. 15:D).

Por último se caracterizan por ser planas, es

decir la lámina se extiende con facilidad: F.

tectoria (Fig. 19:E), F. purpurascens (Fig. 9:C) y

F. arundinacea (Fig. 21:A).

Los haces conductores se encuentran bien

distanciados entre sí, rara vez son pequeños y

su contorno nunca es conspicuamente angulo-

so. Los haces de primer orden corrientemente

van alternando con los de segundos orden.

ciaciones. En la parte norte de esta formación

y sólo en áreas muy restringidas, parte supe-

rior del río Cisnes, habita F. argentina, especie

que se destaca por su gran tamaño.

Ultimamente se ha colectado F. Juncifolia y

F. tenuifolia las cuales parecen haber encontra-

do, en esta formación, el biotopo adecuado

para su desarrollo.

MQREFIOLOGICOS

Cada haz conductor va rodeado por vainas.

La vaina externa o parenquimática se observa

claramente en todos los hacecillos, pudiendo

estar interrumpida por trabas esclerenquimá-

ticas en ambas caras o sólo en la cara abaxial o

adaxial. La vaina interna o mestomática está

presente en todos los haces y se diferencia de

la anterior por sus células fuertemente escleri-

ficadas.

La distribución del esclerénquima, la pre-

sencia o ausencia de él tiene importancia en la

delimitación de las especies. Este puede for-

mar sólo una banda hipodérmica en la cara

_abaxial de la lámina, la cual se presenta ya sea

en forma de un grupo aislado de células, como

sucede en: F. magellanica (Fig. 13:D), F. magen-

siana (Fig. 12:E), F. werdermanna (Fig. 11:E), F.

gracillima (Fig. 12:D), F. rubra (Fig. 10:A), F.

contracta (Fig. 18:C) y F. pyrogea (Fig. 10:E). O

formar un estrato subepidérmico continuo de

2 o más células de espesor como se observa en

F. panda (Fig. 14:D), F. juncifolia (Fig. 10:C), F.

tenuifolía (Fig. 12:F), F. kurtziana (Fig. 17:D), F.

nardifolía (Fig. 15:D) y F. pallescens (Fig. 19:B).

Frecuentemente el esclerénquina, además

de agruparse en bandas se presenta asociado a

los haces conductores, formando una traba, es

decir, una columna de células esclerenquimá-

ticas que ponen en contacto al haz conductor

con ambas o sólo una de las epidermis. Se

aprecia la presencia de trabas en las siguientes

especies: F. tectoria (Fig. 19:E), F. orthophylla

(Fig. 11:B), F. chrysophylla (Fig. 16:C), F. deser-

ticola (Fig. 18:D), F. cirrosa (Fig. 22:C), F. tun2-

cata (Fig. 22:E), F. acanthophylla (Fig. 23:E), F.

thermarum (Fig. 24:C), F. monticola (Fig. 24:D),

F. scabriuscula (Fig. 24:B), F. morenensis (Fig.

24:A), F. arundinacea (Fig. 21:A), F. purpuras-

cens (Fig. 9:C), F. hypsophala (Fig. 21:B), F. ar-

gentina (Fig. 21:B).

El clorénquima igual que para toda la sub-

familia de las Festucordeas, se dispone en forma

no radiada. Las células buliformes apenas so-

bresalen del resto de las células epidérmicas a

excepción de F. tectona (Fig. 19:E), F. arund:-

nacea (Fig. 21:A) y F. purpurascens (Fig. 9:C),

donde forman un grupo flabeliforme de célu-

las, fácilmente diferenciables por su tamaño,

del resto de las células epidérmicas.

2. CARACTERES DE LA EPIDERMIS ABAXIAL

En las especies estudiadas y tal como es carac-

terístico para la familia de las Poaceae, la epi-

dermis abaxial está constituida por células que

muestran una gran diferencia de tamaño y

forma. Se observan en ella células largas, las

cuales son siempre más largas que anchas, es

decir extensas longitudinalmente y sus pare-

des pueden ser delgadas o gruesas, lisas O si-

nuosas. Junto a ellas están las células cortas,

más o menos isodiamétricas y que se diferen-

cian a su vez en células suberosas y células

silíceas.

Ya que ésta lleva en su interior el cuerpo

silíceo, representan un elemento de diagnósti-

co importante. Además pueden presentarse

en la epidermis estomas y aguijones.

La distribución de las células cortas, la pre-

sencia o ausencia de ellas permite dividir a las

especies estudiadas en los siguientes grupos:

1. Generalmente las células cortas se presen-

tan en pares, de tal modo que una célula

silícea va junto a una célula suberosa. Su

distribución puede ser uniforme en toda la

superficie de la epidermis o solamente estar

presente ya sea sobre o entre los haces vas-

culares.

l.a. Se presentan uniformemente en toda

la superficie de la epidermis en las si-

guientes especies: F. acanthophylla (Fig.

6:F), F. arundinacea (Fig. 5:F), F. cirrosa

(Fig. 6:B), F. contracta (Fig. 4:A), F. de-

serticola (Fig. 5:B), F. kurtziana (Fig.

4:F), F..magellanica (Fig. 3:B), F. magen-

siana (Fig. 3:A), F. monticola (Fig. 6:C),

F. pyrogea (Fig. 3:C), F. tenufolia (Fig.

4:D), F. thermarum (Fig. 6:E), y F. sca-

bnuscula (Fig. 6:D).

1.b.Se presentan solamente sobre los haces

vasculares, entre ellos están ausentes.

En estas especies las células cortas junto

con presentarse en pares pueden a su

vez presentarse algunas de ellas solita-

rias o en grupos de 3 o más células. Lo

cual se observa en las siguientes espe-

cies: F. argentina (Fig. 7:B), F. hypsophila

(Fig. 7:C), F. panda (Fig. 4:B), F. tectona

(Fig. 7:D) y F. werdermanna (Fig. 3:D).

2. Las células cortas se presentan en forma

individual, solitarias. Sólo existen células

suberosas en las siguientes especies: F. chr)-

sophylla (Fig. 5:D), F. juncifolia (Fig. 4:C), F.

orthophylla (Fig. 5:C) y F. morenensis (Fig.

6:A).

3. Por último existen especies en las cuales no

se observa un claro ordenamiento de las

células cortas, de tal modo que en ellas pue-

den estar ausentes en ciertos lugares, pre-

sentarse en forma individual en otros o for-

mar sólo un par, ello acontece en: F. gracilli-

ma (Fig. 3:E), F. nardifolia (Fig. 5:A), F. pa-

llescens (Fig. 4:E), F. purpurascens (Fig. 7:A),

F. rubra (Fig. 3:F) y F. tunicata (Fig. 5:E).

El cuerpo silíceo es generalmente de forma

elíptica o redondeada, una excepción hace F.

tectoria (Fig. 7:D), la cual presenta cuerpos silí-

ceos alargados horizontalmente y de contorno

- SINUOSO.

Aguijones se observan en: F. hypsophila (Fig.

7:C), F. gracillima (Fig. 3:E), F. morenensis (Fig.

6:A), F. pallescens (Fig. 4:E), F. pyrogea (Fig.

3:C), F. rubra (Fig. 3:F), F. scabriuscula (Fig.

6:D), F. tectoria (Fig. 6:D) y F. werdermannu

(Fig. 3:D).

Estomas están. presentes en F. purpurascens

(Fig. 7:A) y F. arundinacea (Fig. 5:F).

Con la intención de diferenciar claramente

estos caracteres en los dibujos que se acompa-

ñan se ha marcado con líneas interrumpidas la

parte de la epidermis ubicada sobre los haces

conductores. Las células suberosas llevan pun-

teaduras y las células silíceas líneas continuas.

XK E YUVIANWUVUNA VUVULUYA

ar dl e

2 Y MUASSUVUUVYUYVVV

E MUI IM da E

0,1mm 0,1mm

Cc D

E 0.1mm F 0,1mm

Fig. 3 Epidermis abaxial: A. F. magensiana (Sillard 16-1-1956); B. F. magellanica (Ricardi £ Matthei 261); C.F. pyrogea

(Ricardi 8 Matthei 489); D. F. werdermanni (Ricardi, Marticorena € Matthei 692): E F. gracillima (Pisano 2895); F. F.

rubra (Mooney 453).

0,1 mm

E F

- Fig. 4. Epidermis abaxial: A. F. contracta (Ricardi £ Matthei 318); B. F. panda (Looser 1932); C. F. juncifolia (Pisano

2478); D. F. tenuifolia (Magens 3287); E. F. pallescens (Montero 15-1-1958); F. F. kurtzzana (Ricardi, Marticorena ée

Matthei 87).

rece EI A

Di eE a. ;

nnnpgrnna LO vna Y

10 (4 %

pS A

III PNUD (9

» 0,1 mm

A 0,1mm B

0,1mm

-- - €) SU == ===>

== ES E a €”. 3 ]

TZ RRA

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A =>

— MOL A

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=> == , 2

G Mz

Fig. 5. Epidermis abaxial: A. F. nardifolia (Marticorena, Matthei € Quezada 114); B.F. deserticola (Ricardi, Marticore

na £ Matthei 640); C. F. orthophylla (Marticorena, Matthei £ Quezada 216); D. F. chnysophylla (Zóllner 758), E. F

tumcata (Jiles 2694); F. F. arundinacea (Matthei).

RT ER. 0,1mm

TZ lY,

o RA Dor a AO

$ » Y,

2 : PS

A o 9

; S E Ly PARTIR

+ fs 0%,

ás %, EZ

4 le E%

0.1 mm 0,1mm

C D

0,1mm

Fig. 6. Epidermis abaxial: A. F. morenensis (Ricardi, Marticorena é Matthei 1407); B. F. cirrosa (Pisano 2618); C. F.

monticola (Ricardi 5394); D. F. scabriuscula (Matthei 291); E. F. thermarum (Montero 4442). F. F. acanthophylla (Jiles

4210).

0.1 mrr

Mé) Ez =D j VID 207

Q A

o anta e

Y E |

Fig. 7. Epidermis abaxial: A. F. purpurascens (Montero 2023); B. F. argentina (Lailhacer); C. F. hypsophala (Ricardi,

Marticorena $ Matthei 1608); D. F. tectoria (Ricardi, Marticorena €e Matthei 165).

3. CLAVE PARA DIFERENCIAR LAS ESPECIES BASADA EN LA ESTRUCTURA DE LA

EPIDERMIS ABAXIAL Y CARACTERES ANATOMICOS DE LA LAMINA

A. El esclerénquima se presenta en la cara abaxial de la lámina sólo en forma de

banda hipodérmica.

B. Esclerénquima formando una pequeña banda sólo frente al haz y margen de

la lámina.

C. Número de haces vasculares 5.

D. Células cortas formando pares.

E. Células cortas distribuidas uniformemente en toda la superficie . F. magensiana

". magellanica

F. pyrogea

E”. Células cortas presente sólo sobre los haces conductores.

PAU ONES ASES A A A F. werdermannú

o SN a UN AA F. gracillima

D'. Células cortas generalmente solitarias .............. +++... ....... F. rubra

C'. Número de haces vasculares 7-11.

G. Células cortas distribuidas uniformemente en toda la superficie F. contracta

Pue F. panda

B'. Esclerénquima formando una banda hipodérmica continua, es decir ininte-

rrumpida a lo ancho de la cara abaxial de la lámina.

G”. Células cortas presentes sólo sobre los haces conductores

H. Células cortas solitarias, solamente células suberosas presentes ....... F. juncifolia

H”. Células cortas, la mayoría de ellas, agrupadas en pares.

I. Células largas de la epidermis no llegan más allá de 0,12 mm de largo F. tenuifolia

I', Células largas de la epidermis alcanzan más allá de 0,2 mm de largo.

J. Número de haces vasculares 10-12. Células cortas sobre los haces

NAPA TES SOMATIAS isósdiiicinó del dl. «LV ha A A F. pallescens

J'.. Número de haces vasculares 7-9. Células cortas formando un par F. kurtziana

A”. El esclerénquima ademas de presentarse en forma de bandas, se presenta

formando trabas, es decir los haces están trabados.

K. Sólo 1-2 haces con trabas, por lo general en la cara abaxial.

L. Banda abaxial, hipodérmica de esclerénquima interrumpida ....... F. nardifolia

L*. Banda abaxial, hipodérmica de esclerénquima continua.

RA, EI O F. deserticola

M'. Células cortas solitarias. Sólo células suberosas presentes.

M. Células cortas formando un par

N. Células largas menores de 0,1 mm de largo ................ F. orthophylla

N”. Células largas mayores de 0,12 mm de largo ............-.- F. chrysophylla

K”. Más de la mitad de los haces posee trabas tanto en la cara abaxial como

adaxial.

O. Banda hipodérmica cubre toda la epidermis abaxial.

P. Número de haces vasculares 14-17.

Q. Paredes de las células largas delgadas y levemente sinuosas ..... . F. tunicata

Q”. Paredes de las células largas, gruesas y fuertemente sinuosas ... F. acanthophylla

P". Número de haces vasculares 7-12.

MiuGélhilas: gortas:solitarias e iaa sciss. IA IRAN F. morenensis

R”. Células cortas formando pares.

S. Traba esclerenquimática adaxial angosta ......ooooooooomo... F. cirrosa

S'.. Traba esclerenquimática adaxial en forma de T.

T. Epidermis adaxial con pelos papilosOs .......0ooooooooo.. F. monticola

T'. Epidermis adaxial con macropelos.

U. Epidermis abaxial cOn triCOMAS ....ococcocoroncooo o... F. scabriuscula

U'+pEpidermis abaxial sin tricomas LAO F. thermarum

O”. No existe banda abaxial hipodérmica que cubra toda la epidermis.

Esclerénquima sólo en forma de trabas.

V. Estomas presentes.

W. Número de haces vasculares 20-30. Estomas abundantes ......: F. arundinacea

W”. Número de haces vasculares 12-14. Estomas escasos ..........- F. purparascens

V”. Estomas ausentes.

Mumnero de Haces vasculares T1-12 . iocuiós nn ci A F. argentina

X'”. Número de haces vasculares superior a 16.

Y. Cuerpos silíceos elípticos o redondeados ........... ... F. hypsophila

Y”. Cuerpos silíceos alargados horizontalmente

y de contorno SINuosO «++ .<.<.0.ooo.o..> A F. tectoria

4. CARACTERES DEL EMBRION

El embrión del género Festuca posee una es-

tructura particular que Reeder (1957: 759)ha

denominado con el nombre de festucoídeo y

que ha caracterizado de la siguiente manera:

a. El embrión ocupa una pequeña porción del

total del fruto.

b. Las trazas vasculares que se dirigen al escu-

telo y al coleóptilo divergen aproximada-

mente en un mismo punto.

C. La coleorriza y el escutelo no están separa-

dos por hendidura. :

d. Los márgenes de la primera hoja embrional

no se sobrepasan.

Todos estos caracteres fueron corrobora-

dos en las tres especies estudiadas (F. acanthop-

hylla, F. kurtzana y F. gracillima).

1mm

0,1mm

Fig. 8. A. Corte longitudinal del fruto. F. acanthopylla

(Ricardi, Marticorena £e Matthei 902); B. Corte longitudi-

nal del embrión. F. gracillima (Pisano s / n).

El haz conductor se representa de negro.

DIFERENCIACION DE FESTUCA CON GENEROS AFINES

Debido a la estrecha relación que posee el

género Festuca, en especial con Vulpia y Poa,

frecuentemente, ellos han sido confundidos.

Con la intención de prevenir este error, se ha

creído conveniente agregar una clave, que no

A. Cariopse con el hilo lineal.

B. Plantas anuales

B”. Plantas perennes.

C. Parte basal del tallo dilatada, formando un cormo

C”. Parte basal del tallo no dilatada

DOC O TORO O ORO ROO RO ORO OO O O OO O dy OO RR O OO OO O O OR OO O

...

DOI DADO OOOO O OO ORO OR

sólo permita separar a estos géneros, sino que

además, apreciar las diferencias existentes con

los géneros Bromelica y Puccinellia, algunas de

cuyas especies también han sido consideradas

como Festuca.

Vulpia

Bromelica

Festuca

A”. Cariopse con el hilo punctiforme o aovado.

D. Lemma con el dorso redondeado. Flores hermafroditas

D'. Lemma con el dorso carenado. Flores unisexuales o hermafroditas

Puccinellia

Poa

DESCRIPCION DEL GENERO

FESTUCA L.

Festuca L. Sp. Pl. ed. 1:73. 1753; Gen. Pl. ed. 5:

33. 1754; E. Desv. in Gay, Flora chilena 6: 422.

1853; Hackel, Monographia Festucarum eu-

ropaearum 77-79. 1882; Túrpe, Darwiniana

15, 1-2: 199-200. 1969; Nicora, Flora Patagó-

nica 3: 93-94. 1978.

Tipo del género: Festuca ovma L.

Plantas perennes, densamente cespitosas. In-

novaciones intravaginales o extravaginales.

Cañas floríteras erguidas o nutantes de 6-180

cm de largo, uni-trinodeas. Vaimas por lo ge-

neral totalmente glabras, abiertas total o par-

cialmente. Lígula a menudo bilobulada, 0,1-5

mm de largo, generalmente finamente ciliada

en el ápice. Aurículas sólo excepcionalmente

presentes. Láminas comúnmente glabras, lisas

o escabrosas de 1-60 cm de largo y de diferen-

tes grosores, pudiendo ser capilares (0,3-0,4

mm), setáceas (0,5-0,7mm), subjunceas (0,8-1

mm), junceas (1,1-2 mm) o planas (más de 2

mna). Inflorescencia en panícula, amplia o es-

trecha de 1-50 cm de largo. Espiguillas 2-8

floras, de 4-18 mm de largo, raquilla glabra o

pubescente, articulada arriba de las glumas y

entre los antecios, éstos comúnmente caedi-

zos. Glumas 2, glabras o brevemente ciliadas

en los márgenes, pudiendo ser tan largas,

iguales o menores que el antecio contiguo, la

inferior 1(3)-nervada, de 2-8 mm de largo, la

superior 3(5)-nervada de 3,5-9 mm de largo.

Lemma lanceolada, 5-nervada, glabra o pu-

bescente de 5-10 mm de largo, mútica o arista-

da, arista de 1-8 mm de largo. Palea igual o

poco menor que la lemma, bicarenada con

ápice entero o bidentado. Lodículas 2. Bífidas,

membranosas de 0,8-1 mm de largo. Estam-

bres 3. Anteras de 1-5 mm de largo. Ovario de

ápice glabro, pestañoso o pubescente. Cariop-

se de 2,8-4,5 mm de largo, libre o adherido a la

palea y lemma. Dorso convexo. Hilo linear

cubriendo las 2/3 partes del fruto. Embrión

pequeño.

CLAVE PARA LA DETERMINACION DE LAS ESPECIES

A. Plantas rizomatosas.

B. Láminas planas de 2,5-6 mm de ancho ......

l. F. purpurascens

B”. Láminas setáceas o junceas, 0,6-1,1 mm de ancho.

Mi Ecamaglabra rd rs

e Lemma pubescenté mui) 0 ds RIO:

A”. Plantas cespitosas.

D. Lemma pubescente.

vris 0.00 pro io do 2d le desd

2. F. rubra

3. F. juncifolia

E. Láminas capilares a setáceas. Gluma inferior de 2-3,5 mm de largo. Plantas

del extremo sur del país (XII Región) ....

4. F. pyrogea

E'. Láminas subjanceas a junceas. Gluma inferior de 4,5-6 mm de largo.

Plantas del extremo norte del país (l a IV Región) ..................

D'. Lemma glabra.

5. F. orthophylla

F. Todos los haces sin trabas adaxiales sólo excepcionalmente el haz central la

posee.

G. Láminas con 3-5 haces conductores.

H. Láminas pubérulas en su parte basal. Plantas del norte del país

(RestonesTLL-I VJ. 0.000 a Se

6. F. werdermannú

H”. Láminas glabras en su parte basal. Plantas del extremo sur del país

(XII Región).

I. Espiguillas de 12-15 mm de largo

P. Espiguillas de 3-10 mm de largo.

J. Cañas floríferas de 50-90 cm de alto. -hsoe Tora «le

7. F. gracillima

8. F. magensiana

J. Cañas floríferas de 10-45 cm de alto.

K. Lienma muútica 02. .0o...

K”. Lemma aristada agil... E...

G”. Láminas con 6-14 haces conductores.

e «eje e da as a e a a

9. F. tenuifolia

10. F. magellanica

L. Láminas no mayores de 2-3 cm de largo.

LL. Lemma de 4,0-4,4 mm de largo .......

LL”. Lemma de 5-5,5 mm de largo ........

L”. Láminas mayores de 5 cm de largo.

M. Láminas pubérulas en la base ..........

M”. Láminas glabras en la base.

¿no eje, efe fot toa fea.

ada 00 a ra o

11. F. panda

12. F. nardifolia

13. F. chrysophylla

N. Láminas dobladas en 90” con respecto a su vaina, éstas violáceas ... 14. F

N”. Láminas erguidas. Vainas pajizas.

O. Glumas tan largas o poco menores que el antecio contiguo ..... 15. E

. kuriziana

. contracta

O”. Glumas menores que la mitad del antecio contiguo.

P. Espiguillas de 8-9 mm de largo. Plantas del norte del país (1-11

A A E A E Oe na

. deserticola

P”. Espiguillas de 9-15 mm de largo. Plantas del sur del país (XI 17. F. pallescens

Región. «idos! al... A rbrtadol abr

F". La mayoría de los haces con trabas adaxiales.

O. Lígula densamente ciliada.

R. Láminas planas con 20 o más haces conductores

R”. Láminas junceas con 12-16 haces conductores

Q”. Lígula glabra o sólo con ralas cilias.

e 1 rr RO OO 0 bs e 206%

S. Láminas planas

S'. Láminas junceas o setaceas.

T. Inflorescencia densa, especiforme. Cara abaxial de la lámina ondulada

". tectoria

". hypsophila

arundinacea

21. F. argentina

T”. Inflorescencia amplia; cara abaxial de la lámina lisa.

U. Ergula de:2-5: min de largo 7... 0. A 22. F. cirrosa

U”. Lígula menor de 2 mm de largo.

V. Vainas finamente pubescentes. Láminas en su parte basal adaxial

pubescentes.

W. Láminas en corte transversal de contorno redondo. Por lo

general finamente escabrosas en su cara abaxial .......... 23. F. tunicata

W”. Láminas en corte transversal de contorno elíptico, lisas en su

cara aba. cc A PRA, LA 24. F. acanthophylla

V”. Vainas glabras. Láminas en su parte basal adaxial glabras.

X. Láminas en corte transversal de contorno redondo. Láminas

escabrosas.

Y. Lemma de 6-6,5 mm de largo. Plantas de la II Región .... 25. F. morenensis

Y”. Lemma de 7-8,5 mm de largo. Plantas de la VIIN-1X Región

26. F. scabriuscula

X”. Láminas en corte transversal de contorno elíptico. Láminas lisas.

Z. Láminas junceas. Cañas floríferas de 60-100 cm de alto

7”. Láminas subjunceas. Cañas floríferas de 25-50 cm de alto ..

FESTUCA PURPURASCENS Banks 8c So-

land. ex J.D. Hook., Fl. antarct. 1 (2): 383.

Lam. 140, 1847. Typus: Strait of Magal-

haens; Port Famine, Capt. King (K. non

vidi. Isotypus P, vidi). Fotogr. CONC

—Festuca purpurascens Banks £ Soland. ex

J.D. Hook. var submutica E. Desv. in Gay,

Fl. Chil. 6: 429. 1854 —Festuca purpuras-

cens Banks € Soland. ex J.D. Hook var.

genuma St.-Yves, Candollea 3: 267. 1927.

Festuca purpurascens Banks £ Soland. ex

J.D. Hook. var aristata E. Desv. in Gay. Fl.

Chil. 6: 429. 1854. Typus var.: San Carlos,

provincia Chiloé, sobre peñascos a la orilla

del mar. Gay (P, non vidi).

Festuca insularis Steud., Syn. Pl. Glum. 1:

312. 1854. Typus: In Insula Valenzuela

prope Valdivian. Lechler 276 (P, vidi, Fo-

togr. CONC) —Festuca purpurascens Banks

O 27. F. monticola

..28. F. thermarum

€ Soland. ex D.J. Hook. var. genuina St.-

Yves forma aristata St-Yves 3: 268. 1997.

Festuca platyphylla Steud., Syn. Pl. Glum. 1:

428. 1854. Typus: Sandy Point Magellan.

Lechler 1224 (P, vidi Fotogr. CONC. Iso-

typus: MB Fotogr. CONC) —Festuca pur-

purascens Banks £e Soland. ex. J.D. Hook.

var. platyphylla (Steud.) St.-Yves Candollea

332 /d::1927 :

Festuca Lechlernana Steud., Syn. Pl. Glum.

1: 428. 1854. Typus: Sandy Point Mage-

llan. Lechler 1224 a (P. vidi, Fotogr.

CONC).

Festuca laxiflora Phil. Linnaea 29: 98. 1857.

Typus: Loco S. Rafael dicto peninsulae

Tres Montes. Legit. Cl. Fonk. (SGO, vidi.

Fotogr. CONC).

Fig. 9. F. purpurascens: A. Planta (Seki 309); B. Lígula (Ricardi 8: Matthei 125); C. Transección de la lámina (Junge 19: 12.

1931); D. Espiguilla (Lechler 1224); E. Fruto (Dollenz 25).

Festuca dumetorum Phil., Linnaea 33: 297.

1864. Non F. dumetorum L. Typus: ln

praedio meo “San Juan” crescit. (SGO. vi-

di) —Festuca trachylepis Hack. im Druce

Bot. Exch. Club Brit. Isles Rep. 4: 30.

1951 —Festuca philippu Becher, Candollea

320. TOYS:

Festuca davilae Phil., Anales Unwversidad de

Chile 94: 176. 1896 Typus: In subandinis

provinciae Santiago loco dicto salto de

Conchalí. Plelippi (SGO, non vidi).

Festuca glaucophylla Phil., Anales Universi-

dad de Chile 94: 178. 1896. Typus: In valle

fluminis Palena ab orn. Frid. Delfin Lecta

fuit. (SGO, non vidi).

Festuca serrano: Phil., Anales Universidad de

Chile 94: 178. 1896. Typus: In valle flumi-

nis Palena ab orn. —Frid. Delfin lecta fuit.

(SGO, non vidi).

Festuca purpurascens Banks € Soland. ex.

J.D. Hook. var. genuina. St.-Y ves forma sca-

briuscula St.-Yves, Candollea 3: 269. 1927.

Typus forma: Valdiviana. Philipp (B, non

vidi).

Iconografía: Hooker 1847: Lam. 140;

Samit-Yves 1927: Gig. 73, 74 ly 17; La;

tour 1970: Fig. 42, Nicora 1978: Fig. 56;

Eneltexto: Fig. 7:A. FigJ9: AMBIC,D y E.

Innovaciones extravaginales. Rizomas

hasta de 10 cm de largo. Cañas floríferas

erguidas, binodes de 30 a 90 cm de alto.

Vainas glabras. Lígula glabra, 0,5-1,5 mm

de largo, borde a menudo finamente laci-

niado. Láminas glabras, planas, 10-30 cm

de largo, 2,5-6 mm de ancho. Panícula

amplia, ramificaciones inferiores de 3-10

cm de largo. Espiguillas 4-8 floras, 10-16

mm de largo. Gluma inferior 1-nervada,

2,8-5 mm de largo, la superior 3-nervada,

4,2-7 mm de largo. Lemma glabra, 6-9

mm de largo, acuminada o aristada, arista

de 3,5-6 mm de largo. Palea tan larga co-

mo la lemma. Raquilla glabra o pestañosa,

1-2 mm de largo. Lodículas 1,6 mm de

largo. Anteras 3-4 mm de largo. Ovario

pestañoso en el ápice. Cariopse lineal, 4,2

mm de largo. Hilo 3 mm de largo.

Material estudiado:

IX Región: Cautín. Cerro Nielol. 120

m.s.m. Montero 2028, 4523 (MONTERO);

Imperial, frente Estación, Montero 3923

(MONTERO).

X Región: Chiloé. Piruquina. Tamahué.

Junge (CONC); Castro. Cucao. Quilán, al

pie de las dunas de Tricolor, cerca del

lago. Junge (CONC).

XI Región: Aisén. San Rafael. Río Gualas,

Schlegel 2062 (CONC). San Rafael. Cerca-

nías al norte del Hotel. Schlegel 1860

(CONC); Rada de Quesahuén. Ribera Ca-

nal. Schlegel 2058 (CONC); Valle del Pale-

na. Schlegel 5271 (CONC). Río Explorado-

res. Entre Río Verde y Río Teresa. Seki

309 (CONC).

XII Región. Magallanes. Otway. Campag-

ne de la Magiciénne (P); Península Muñoz

Gamero, entrada al lago. En turbal herbá-

ceo a orillas del lago. Dollenz 25 (CONC);

Tierra del Fuego. Estrecho de Magalla-

nes. Hombron (P); Bahía Inútil. Ricardi €

Matthei 125 (CONC).

Observación l:

Desvaux (1854: 429) teniendo en conside-

ración el largo de la arista, diferencia las

variedades submutica y aristata. Saint-Yves

(1927: 267-272) reconoce para esta espe-

cie las variedades genuina y platyphylla.

Además distingue en la primera de éstas

las formas aristata y scabriuscula. Debido a

que los caracteres usados por los autores

antes citados, para separar sus variedades

y formas no son lo suficientemente esta-

bles, se ha creído conveniente no aceptar

esta diferenciación. Se pudo constatar que

el largo de la arista, carácter usado por

ambos autores, varía dentro de una misma

espiguilla, no debiéndose usar, por lo tan-

to como valor diagnóstico.

Observación II:

Se extiende esta especie fundamental-

mente desde la IX a la XII Región. Existe

un ejemplar colectado de las cercanías de

Santiago, Conchalí (Tipo de F. davilae) el

cual por estar bastante alejado del princi-

pal centro de distribución de la especie,

estaría indicando un posible error de eti-

queta.

Por sus características vegetativas, po-

see rizoma y hojas anchas, con escaso es-

clerénquima, es una planta que poaría de-

sempeñar un papel en el mejoramiento de

nuestras praderas. Parodi (1953: 184-

188) al respecto afirma: “por sus hojas

glabras, planas y algo suculentas es útil

como forrajera, tiene además la ventaja de

producir granos fértiles; no difíciles de

cosechar. Es una de las gramíneas útiles

que conviene defender del excesivo pasto-

reo y fomentar su propagación en su re-

gión de origen”.

NESTUCA RUBRAL. Sp. Pl. 1: 74. 1753.

Typus: Hab. in Europa sterilibus (LINN,

non vidi).

Festuca rubra L. var. genuina subvar. juncea

Hackel in St-Y ves, Candollea 3: 270. 1927.

Nom. nudum.

Iconografía: Hitchcock 1951: Fig. 70;

Hubbard 1959: p. 114, 116: Nicora 1978:

5.005, En elitexto; Mg. 3:E; Fig. .10:A.

Rizomatosa, innovaciones extravaginales.

Cañas floríferas geniculadas en la base,

binodes, 15-20 cm de alto. Vainas glabras.

Lígula pequeña, 0,5 mm de largo, margen

con la vaina lobulado. Láminas setáceas,

2-5 mm de largo. Panícula contraída, 2-3

cm de largo, con 5-10 espiguillas, éstas 2-3

floras, 6-7,5 mm de largo, Glumas glabras.

Inferior 1-nervada, 2,5 mm de largo, la

superior, 3-nervada, 4 mm de largo. Lem-

ma glabra, 5 mm de largo. Arista 1-1,5

mm. Palea bicarenada. Lodículas 0,6 mm

de largo. Anteras 2-3 mm de largo. Ovario

glabro.

Material estudiado:

Región Metropolitana: La Parva, wet mea-

dow at 9.500 feet above La Parva. Mooney

453. (CONC).

Distribución Geográfica:

Especie cosmopolita, habita en las regio-

nes montañosas del mundo. Para Chile

sólo existe material de herbario prove-

niente de la cordillera de Santiago.

. FESTUCA JUNCIFOLTA St.- Amans. Fl.

Agenaise 40. 1821. Typus: France, Dans

les Landes. Non vidi.

Iconografía: Hubbard 1959: 118; Nicora

1978: Fig. 57. En el texto: Fig. 4:C; Fig.

10:B y C.

Rizomatosa. Culmos de 20-50 cm de alto,

binodes. Vainas glabras. Lígulas membra-

nosa, 0,5 mm de largo, finamente lacinia-

da en el ápice. Láminas junceas, 1-1,5 mm

de ancho y 30 cm de largo, ápice agudo.

Panícula pauciespigada con 8-15 espigui-

llas. Espiguillas de 10-18 mm de largo con

4-12 flores. Glumas ligeramente desigua-

les, 3-nervadas, la inferior de 6-8 mm de

largo, la superior de 8-10 mm de largo.

Lemma pubescente de 7-10 mm de largo,

aguda o aristada, arista hasta de 3 mm de

largo. Palea menor que la lemma. Raquilla

de 0,8 mm de largo, pubescente. Anteras

de 4-5 mm de largo. Lodículas de 1 mm de

largo. Ovario glabro.

Material estudiado:

XII Región: Tierra del Fuego. Asenta-

miento Timaukel. En pradera costera,

suelo arenoso. Pisano 2478 (CONC, HIP).

Observaciones:

Especie europea. Hubbard (1959: 119) in-

dica que crece en dunas costeras de Ingla-

terra y en las costas de Europa, desde Ho-

landa hasta España. Para la parte Argenti-

na de Tierra del Fuego fue citada por

primera vez por Nicora (1973: 98), poste-

riormente esta misma autora (1978: 101)

la cita también para Chile.

. FESTUCA PYROGEA Speg., Anales Mus.

Nac. Hist. Nat. Buenos Aires 5: 97. 1896.

Typus: Hab. Semel tantum caespites pleu-

res inventi in scopulosis prope Ushuuáia

(LPS, non vidi) - Festuca ovina L. var. pyro-

gea (Speg.) Hack. in Skottsberg, Wiss. Er-

gebn. Schwed. Súdpolar Exped. 4,4: 7.

1906.

Festuca ovina L. ssp. hystricola Hack. sub-

var. pubispicula St.- Yves, Candollea 3:

163. 1927. Typus: Patagonie Gouv. de

Sta. Cruz, berds du Río Covle. Leg. £.

Dauber 179. (G, non vidi).

Iconografía: Parodi 1953: Fig. 2B: Pyyk-

kó 1966: Fig. 124; Nicora 1978: Fig. 60.

En el texto: Fig? 3:C “Fig. 10:D y E.

Densamente cespitosa. Innovaciones in-

travaginales. Cañas floríferas erectas 1-2

nodes, gráciles, 10-30 cm de alto. Vainas

glabras o pubescentes, cerradas en su ter-

cio inferior. Lígula bilobulada, breve, de

0,2-0,5 mm de largo, pestañosa en el ápi-

ce. Láminas capilares a setáceas de 0,2-0,5

mm de ancho, algo encorvadas, de 2-5 cm

de largo, pubescente en la cara adaxial.

Panoja espiciforme de 2-10 cm de largo,

con 8-15 espiguillas. Espiguillas 3-5 floras

de 6 a 10 mm de largo. Glumas menores

que la mitad del antecio contiguo, glabras,

la inferior 1 (3)nervada de 2-3,5 mm de

largo, la superior 3 (5) nervada de 4-5 mm

de largo. Lemma piloso-hirsuta de 5-7

mm de largo, arista de 2-3 mm. Palea tan

larga como la lemma. Lodículas 0,5 mm

de largo. Estambres con anteras de 1 mm

de largo. Ovario glabro. Cariopse de 3

mm de largo.

Material estudiado:

XI Región: Coihaique. Cercanías Lago Se-

co. Schlegel. 2365 (CONC).

XII Región. Ultima esperanza. La Cumbre.

Baguales. Ricard: 8 Matthei 412 (CONC);

Sierra Cazador. Cerro Castillo. 850-900

m.s.m. Ricardi € Matthei 489 (CONC)yPto.

Consuelo. Herb. Magens 3219 (B); Maga-

llanes. Vertiente Río Penitente. Roehrs

(HIP); Los Azules. Forma champas en fal-

deos áridos. Pisano 2747 (CONC); Los

Azules. En faldeos ripiosos, secos. Pisano

2765 (CONC); Isla Magdalena. Forma

champas en suelo arenoso. Pisano 2888

(CONC); Chabunco. Sillard (HIP); Cha-

bunco. Fischer (HIP); Río Verde Roehrs

(HIP); Tierra del Fuego. Caleta Josefina.

Ricard: € Matther 162 (CONC). Caleta Jo-

sefina, dunas. Ricardi € Matthei 170

(CONC); Manantiales. Magens 27 (HIP);

Isla Contramaestre. Forma champas suel-

tas en pradera mésica. Pisano 2897

(CONC); San Sebastián. Ricardi £ Matthei

239 (CONC); Estancia Cameron. Ricardi

$ Matthe: 181 (CONC); Fiordo Parry.

Punta Canoa. En asociación herbácea cos-

tera. Pisano 3124 (CONC); Fiordo Parry,

Bahía Cuevas. Forma champas en playas

arenosas. Escasa. Pisano 2955 (CONC);

Vicuña. Ricardi £ Matthei 208 (CONC).

5. FESTUCA ORTHOPHYLLA Pilger, Bot.

Jahrb. Syst. 25: 717. 1898. Typus: Perú.

Vincocaya alrededores de Arequipa. Die-

ses wáchst in Bingen. 1-11. 1877. Stúbel 87.

(B, vidi. Fotogr. CONC).

Iconografía:

Saint-Yves 1927: Fig. 29, 30; Cabrera

1957: Fig. 10.E. Lam. 12, Túrpe 069:

Fig. 25; Tovar 1972: Fig. 9 A. En el texto:

Fig. DEC: Fig. 11: AB.

Nombre vulgar: Iro, Iru, Paja de Puna.

Plantas densamente cespitosas. Cañas flo-

ríferas erguidas, binodes de 35-80 cm de

alto. Vainas en su parte superior tinamen-

te pubescentes. Lígula breve de 0,3-0,5

mm de largo, apenas lobada, densamente

cubierta de pelos. Láminas junceas, blan-

quecinas, rígidas y punzantes, de 1-1,5

mm de ancho y de 6-10 cm de largo. Cara

adaxial densamente pubescente de tal ma-

nera que sus pelos sobresalen por su mar-

gen para formar una línea blanquecina.

Cara abaxial glabra a excepción de la base

que a menudo es pubescente. Panoja an-

gosta, linear de 5-10 cm de largo, con 15-

30 espiguillas. Espiguillas de 8-9 mm de

largo, 2-5 floras. Glumas lineal-

lanceoladas, con los márgenes ciliados,

mayores que la mitad del antecio conti-

guo, la inferior 1-nervada de 4,5-6 mm de

largo, la superior 3-nervada de 5-7,2 mm

de largo. Lemma de 6-8 mm de largo,

acuminadas, márgenes pilosos. Palea de

5-6 mm de largo con carenas pilosas. Ra-

quilla de 1-1,6 mm de largo, pilosa. Lodí-

culas de 0,7 mm de largo. Antera de 3 mm

de largo. Ovario glabro. Cariopsa no ob-

servado.

Ds ,

Fig. 10. F. rubra: A. Transección de la lámina (Mooney 453) F. juncifolia: B. Espiguilla (Pisano 2478): C. Transección de la

lámina (Hubbard 1959: 118); F. pyrogea: D. Espiguilla (Ricardi £ Matthei 163): E. Transección de la lámina (Ricardi £

Matthei 162).

Material estudiado:

I Región Aguas calientes. Tacora. 4600

m.s.m. Ricardi 3385 (CONC); Camino de

Chucuyo a las Lagunas de Cotacotani,

Km. 5. 4400 m.s.m. Marticorena, Matther €e

Quezada 216 (CONC); Camino de Putre a

Chucuyo, Km. 10. 4250 m.s.m. Marticore-

na, Matther 8 Quezada 192 (CONC); Entre

Paquisa y Achechamayo. Philippi

(CONC); Cordillera Columtucsa. Apa-

cheta. Alt. ca. 4600 m.s.m. Werdermann

1072 (B).

II Región: Camino de Chuqui a Conchi.

4100 m.s.m. Ricardi, Marticorena e Matthe:

489 (CONC).

IV Región: Poco más abajo de los Baños del

Toro. Jiles 4451 A (CONC).

Distribución geográfica:

En Chile se le ha colectado en la I, Il y IV

Región. Esta especie debería extenderse

en forma ininterrumpida a lo largo de la

alta Cordillera de los Andes, por sobre los

4000 m.s.m. desde la I a la IV Región. A

pesar de no existir material de herbario

que corrobore esta distribución, las condi-

ciones climáticas semejantes que reinan en

esta zona permiten predecirla.

En Perú, para donde fue originalmente

descrita, posee según Tovar (1972: 42)

una amplia distribución en la parte sur de

la Puna. Para este mismo hábitat la señala

Cabrera (1957: 362), indicándola como

una especie dominante de la alta Puna

Argentina.

Observación Il.

Los habitantes de la alta cordillera de la 1

Región usan esta especie para la confec-

ción de los techos que cubren sus casas.

. FESTUCA WERDERMANNII St.-Yves,

Candollea 3: 301. 1927. Typus: Prov. Co-

quimbo. Baños del Toro, ca. 3600 m.s.m.

12. 1923. Werdermann Pl. Chil. 209 (G, non

vidi. Isotypus: B, vidi, Fotogr. CONC).

Iconografía: Saint-Yves: Fig. 92. En el

texto: Fig. 3:D; Fig. 11: C,D,E:

Cespitosa. Cañas floríferas 1-2 nodes,

erectas, 25-40 cm de alto. Vainas glabras o

finamente pubérulas. Lígula 1-2 mm de

largo, margen ciliado y superficie pubéru-

la. Láminas junceas de 0,9-1,1 mm de an-

cho y de 3-7 cm de largo, acuminadas, cara

abaxial, glabra, sólo en la base pubérula,

cara adaxial pubescente. Panoja linear de

5-10 cm de largo. Espiguillas de 7-9 mm

de largo, 3-5 flora. Glumas desiguales,

ambas menores que la mitad del respecti-

vo antecio, la inferior uninervada de 2,3-3

mm de largo, la superior 3-nervada de

2,5-4 mm de largo. Lemma de 4-6 mm de

largo, glabra, con el ápice agudo u obtuso

y escarioso. Palea poco más corta que la

lemma, con las carenas glabras. Raquilla

de 1-1,5 mm de largo, glabras. Lodículas

de 0,7 mm de largo. Anteras de 2,3 mm de

largo. Cariopse de 4-5 mm de largo, obao-

vado, munido de pequeñas pestañas en el

ápice, hilo igual o poco mayor que la mitad

del fruto.

Material estudiado:

III Región. Río Sancarrón above Corrales;

dense tufts in vega near stream; leaves

pungens. River Valley below Paso de San-

carrón ca. lat. 29935" S. Ca. 3700 m.s.m.

Johnston 6222 (SGO).

IV Región. Baños del Toro, 3200 m.s.m.

Ricardi, Marticorena € Matthei 692

(CONC). i

Distribución geográfica:

Especie de reducida distribución, sólo se

le ha encontrado en la alta cordillera andi-

na en el extremo sur de la 111 Región y

norte de la IV Región, donde crece a ori-

llas de arroyos entre los 3200 a 3700

m.s.m.

. FESTUCA GRACILLIMA J.D. Hook. Fl.

antarct. 2: 383. 1847. Typus: Hab. Strait

of Magalhaens; Port Famine, Capt. King

(K, non vidi). Isotypus: B, P, vidi).

Iconografía: Saint-Yves 1927: Fig. 12,13.

Parodi 1953: Fig. 3 A, A”; Nicora 1978:

Fig. 64. En el texto: Fig. 3: ES Hice:

A,B,C,D.

Fig. 11.F. orthophylla: A. Planta (Martico

(Ricardi, Marticorena 8c Matthei 692); E. Transe

rena, Matthei £e Quezada); F. wedermannit: C. Espiguilla (Johnston 6222); D. Lígula

cción de la icore

lámina (Ricardi, Marti na € Matthei 692).

Nombre vulgar: Coirón dulce

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas gráciles, uni-o binodes,

10-40 cm de alto. Vaimas glabras. Lígula

de 0,5 mm de largo, bilobulada, finamen-

te pestañosa en el margen. Lámimas setá-

ceas de 0,5-0,7 mm de ancho y de 5-40 cm

de largo, glabras en la cara abaxial y fina-

mente pubescentes en la cara adaxial. Pa-

nojas erguidas o nutantes con ramas de

0,5-1 cm de largo con dos a cinco espigui-

llas. Espiguillas de 12-20 mm de largo, 3-8

floras. Gluma inferior menor que la mitad

del antecio contiguo, l-nervada de 3-6

mm de largo, la superior de 5-8 mm de

largo, 3-nervada. Lemma lanceolada, ge-

neralmente glabra en el dorso y finamente

escabroso en el margen y ápice, de 7,5-10

mm de largo. Arista 1-8 mm de largo.

Palea bidentada con carenas pestañosas,

tan larga como la lemma. Lodículas de 1

mm de largo. Ovario munido de cortas

cerdas en el ápice. Anteras de 4,5 mm de

largo. Cariopse 4-4,5 mm de largo, lineal-

elíptico, hilo lineal de 1,8 mm de largo.

Material estudiado:

Región XII: La Cumbre. Baguales. Ricar-

di 8 Matthei 405 (CONC); Sierra Baguales.

Estancia La Cumbre. 600 m.s.m. domi-

nante en estepa duriherbosa. Pisano 3628

(HIP); Magallanes, Cerro Guido. Estancia

Guido. 770-900 m.s.m. Pfister 8 Ricard:

(CONC); Salto Grande del Paine, en talu-

des rocosos. Pisano 2368 (HIP); Sierra Ca-

zador. Cerro Castillo, 850-900 m.s.m. R1-

cards € Matther 495 (CONC); Laguna So-

fía, forma champas en faldeos con tierra

suelta. Pisano 2811 (HIP); Magallanes.

Morro Chico. Sobre el Morro. Pfister 8

Ricard: (CONC); Morro Chico, Ricard: $

Matthei 358 (CONC); Estancia Tita. Isla

Riesco. Camino a orillas del Seno Skyring.

Pfister 8 Ricardi (CONC); Pecket. Magens

(HIP); Estancia Otway. Cerca Cemente-

rio. Pfister 8 Ricardi (CONC); Tierra del

Fuego. Magens 3203 (B); Caleta Josefina.

Forma champas en estepa duriherbosa.

Dominante. Pisano 3625 (HIP); Punta Es-

pora. Magens (HIP); Punta Espora. Ma-

gens 3229 (B); Manantiales. Magens (HIP);

Lote Quintana. Bahía Felipe. Forma

champas aisladas entre piedras en la

playa. Pisano 3175 (HIP); Cullen. Ricardi

$ Matthei 254 (CONO); Isla Contramaes-

tre. Forma champas en lugares mésicos

con suelo ripioso. Pisano 2895 (HIP); San

Sebastián Ricardi 8e Matthei 241 (CONO);

Estancia Río Hondo, dominante en claros

del matorral. Pisano 2393 (HIP); Porve-

nir. Ricard: £ Matthei 96 (CONC); Caleta

Josefina. Ricardi 8: Matthei 176 (CONC);

Estancia Cameron. Ricard: € Matthei 185

(CONC); Estancia Ultimo sendero. Ma-

gens 3187, 3202 (B); Los Azules. Forma

champas en faldeos áridos. Pisano 2748

(CONC).

. FESTUCA MAGENSIANA Potztal, Wilde-

nowia 2 (2): 166. 1959. Typus: Chabunco,

ca. 35 Km. von Punta Arenas. Fundo Los

Robles. Weg nach Norden, 16.3.1956 S1-

llard. (B. Isotypus: CONC, HIP).

Iconografía: Fig. 3:A; Fig. 12:E.

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas erguidas 2-3 nodes, 50-90

cm de alto. Vainas glabras o finamente

escabrosas. Lígula lobada, 0,2-0,5 mm de

largo, finamente laciniada en el margen.

Láminas capilares, glabras, 0,2-0,3 mm de

ancho y de 15 cm de largo. Panícula de

3-11 cm de largo, con 10-15 espiguillas,

éstas 4-5 floras y de 8-10 mm de largo.

Glumas glabras, la inferior 1-nervada de

2,5-3,4 mm de largo, menor que la mitad

del antecio contiguo. Gluma superior 3-

nervada de 4,3-5,5 mm de largo, poco

mayor que la mitad del antecio contiguo.

Lemma 4,8-6,8 mm de largo, ápice y mar-

gen, brevemente piloso, arista no mayor

de 3 mm. Palea tan larga como la lemma,

hirsuta en el ápice. Lodículas 0,3 mm de

largo. Anteras 1,5-1,7 mm de largo. Fruto

no fue observado.

Material estudiado:

Sólo se conoce para esta especie el mate-

rial tipo.

Observación:

Especie muy afin a F. magellanica, de la

cual podría ser sólo una variedad. Sólo

futuras colecciones podrán demostrar es-

ta sospecha.

FESTUCA TENUIFOLIA Sibth., Fl. Oxo-

niensis 44. 1794. Typus: Dry pastures.

Bullington Green. Non Vidi.

Iconografía: Hubbard 1959: 106. En el

"exto: Fig. 4D; Fig. 124F.

Cespitosa. Innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas binodes, nutantes, gráci-

les de 45 cm de largo. Vaina glabra, cerra-

da en su parte inferior. Lígula bilobulada,

glabra, pequeña. Láminas capilares, 0,3-

0,4 mm de ancho, 5 a 25 cm de largo.

Panícula contraída de 2-10 cm de largo.

Espiguilla de 3-5 mm de largo, 4-7 floras.

Glumas lineales, glabras, mayores que la

mitad del antecio contiguo, la inferior 1-

nervada, 2-2,5 mm de largo, la superior

3-nervada, 2,8-3 mm largo. Raquilla gla-

bra, 1 mm de largo. Lemma glabra, lineal-

lanceolada, mútica, 3 mm de largo. Palea

tan larga como la lemma. Lodículas 0,6

mm de largo. Ovario glabro.

Material estudiado:

XII Región: Punta Arenas. Calle Talca esq.

Carreras. Magens 3287 (B).

Observaciones:

De esta especie sólo se conoce el material

colectado por Magens. Posiblemente, al

no existir material de colección más re-

ciente, esta especie no ha encontrado su

medio adecuado y por lo tanto no se ha

naturalizado en la región.

10. FESTUCA MAGELLANICA Lam., Encyel.

2: 461. 1788. Typus: Detroit de Magellan.

Commerson (P, vidi. Fotogr. CONC) -Festu-

ca ovina L. var. magellanica (Lam.) Hack. in

Dusén, Svenska Exped. Magellanslánder

3: 228. 1900 -Festuca ovina L. var. magella-

nica subvar. lamarckiana St.-Yves, Cando-

llea 3;163., 192.

Festuca duriuscula L. sensu J.D. Hook. Fl.

antarc. 2: 383. 1847,

Festuca ovina L. var. antarctica Hack. in

Dusén, Svenska Exped. Magellanslánder

3: 228. 1900. Typus: Fuegía orientalis:

Río Cullén. Ansorge. (S, non vidi).

Festuca ovina L. ssp. hystricola Hack. in Du-

sén, Ark. Bot. 7 (2): 10. 1907. Typus:

Puerto San Julián in campo: ad Sta. Cruz

emporium in campo; planta utrisque locis

vulgatissima est. (S, non vidi).

Iconografía: Parodi 1953: Fig. 2: A; La-

tour 1970: Fig. 40; Nicora 1978: Fig. 61.

Ep'él texto; HB. 3: By Fig. 13: AGB.C,D,E.

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas erguidas, 1-2 nodes, de

10-40 cm de alto. Lígula bilobulada, 0,1-1

mm de largo, finamente pestañosa en el

margen. Vainas glabras. Láminas capila-

res, glabras, 0,4-0,6 mm de ancho y 3-15

cm de largo. Inflorescencias estrechas, 2-8

cm de largo, pedicelos cortos con 6-12 es-

piguillas, éstas de 7-11 mm de largo, 3-7

floras. Glumas agudas, glabras, la inferior

| (3) nervada, 2,5-4 mm de largo, menor

que la mitad del antecio contiguo. Lemma

glabra sólo finamente pestañosa en su

parte superior, 5-6 mm de largo, arista 2-4

mm. Palea lineal tan larga como la lemma.

Lodículas de 0,7-1 mm de largo. Fruto

lineal elíptico, glabro de 2,8-3 mm de

largo.

Material estudiado:

IV Región: Río Molles. Nacimiento del es-

tero frente a Huana. 3850-3900 m.s.m.

Jiles 4135 (CONC); Cordillera Ovalle.

Quebrada Larga 3500 m.s.m. files 4142

(CONC).

VII Región: Paso Pehuenches. 2500 m.s.m.

Ricardi, Marticorena 8 Matthe: 936

(CONC).

VIIT Región: Ridgetop above termas de

Chillán at 6400 feet. Mooney C 413

(CONC); Termas de Chillán. 2000 m.s.m.

Encima del Valle de las Fumarolas. Schle-

gel 5841 (CONO).

XII Región: Salto Grande del Paine. En

grietas de rocas con acumulación de are-

na. Pisano 2370 (CONC); Las Cumbres.

Fig. 12. F. gracillima: A. Ligula (Ricardi £ Matthei 483); B. Espiguilla (Isotypus); C. Antera (Ricardi £ Matthei 483); F.

magensiana: E. Transección de la lámina (Sillard); F. tenuifolia: F. Transección de la lámina (Magens 3287).

Baguales. 550-850 m.s.m. Ricard: £ Matl-

hei 420, 432 (CONC); Estancia Cerro Cas-

tillo. Magens (HIP); Sierra del Cazador.

Magens (HIP); Laguna Sofía. Forma

champas en faldeos con tierra suelta. Pisa-

no 2810 (CONC); Cueva chica del Milo-

dón. En el piso de bosques ralos. Pisano

2828 (CONC); Est. Brazo Norte. Forma

champas en barrancas rocosas. Pisano

2534 (CONC); Estancia Tita. Isla Riesco.

Seno Skvring. En terreno arenoso cerca

de la playa. Pfister 8 Ricardi (CONC);

Puerto Bellavista Roig, Dollens £ Méndez

5363 (CONC): Tierra del Fuego. Punta

Espora. Magens (HIP); Santa Catalina. Ri-

cardi £ Matthei 261 (CONC); Isla Contra-

maestre. Forma champas en lugares mési-

cos. Pisano 2919 (CONC); Manantiales

Magens (HIP); Caleta Josefina. Ricard: €

Matthei 168 (CONC); Vicuña. Terreno

húmedo, especie de vega. Ricard: £ Matt-

her 213 (CONC); Fiordo Parry. Seno almi-

rantazgo. Forma champas en asociaciones

herbáceas costeras. Pisano 2877 (CONC);

Islote de Puerto Luisa. Forma champas.

Pisano 2841. (CONC). Isla Navarino.

Tsuju (CONC).

Distribución geográfica:

En Chile posee esta especie una amplia

distribución. En las Regiones IV, VII y

VIII habita en la alta cordillera andina,

por sobre los 2000 m. En la Región XII es

un componente -importante de la estepa

graminosa.

Observación 1.

Debido a la casi total ausencia de eclerén-

quima en sus hojas, es una planta impor-

tante para la ganadería, debiendo por lo

tanto estimularse su propagación.

Observación II.

Saint-Y ves (1927: 161-169) reconoce para

América del Sur solamente la presencia de

F. ovina, diferenciando en ella 3 subespe-

cies: eu-ovina, hystricola y magellanica. Para

Chile indica la presencia de F. ovina L.

subespecie eu-ovina Hack. var. vulgaris Koch

y de F. ovina L. subespecie magellanica

(Lam.) St.-Yves var. lamarckiana St.-Y ves.

F. ovina es una especie de distribución

mundial con numerosas subespecies y va-

riedades. Hackel (1882: 82-118) reconoce

sólo para Europa 9 subespecies y 23 varie-

dades. Debido a la enorme distribución y

variabilidad se ha estimado conveniente

adoptar el criterio de Parodi (1953: 193)

manteniendo a F. magellanica como buena

especie. Sólo una revisión de F. ovina a

nivel mundial podrá resolver en definitiva

el verdadero rango de F. magellanica Lam.

. FESTUCA PANDA Swallen, J. Wash.

Acad. Sci. 26: 209. 1936. Typus: Cajón de

los Pelambres. Alt. 2900 m. Depto. Illapel.

Chile. Enero 1932. Leg. G. Looser 2151

(US, non vidi. Isotypus: LOOSER, vidi).

Iconografía: Fig. 4: B; Fig. 14: A,B,C,D.

Planta cespitosa. Cañas floríferas ergui-

das, uninodes de 9-30 cm de alto. Lígula

de 1-3 mm de largo, glabra con el ápice

fimbriado. Vaina glabra. Láminas, glabras

de 1 mm de ancho y de 1-3 cm de largo.

Panoja estrecha erguida de 2-5 cm de lar-

go, con 8 a 15 espiguillas. Espiguillas 3-4

floras, 6-8 mm de largo. Gumas 1-

nervada, lanceoladas, la inferior de 2 mm

de largo, angosta y de ápice agudo, la su-

perior 3 mm de largo y de ápice ligera-

mente obtuso. Lemma de 4,4 mm de lar-

go. Palea tan larga como la lemma. Ante-

ras 3, de 2,2 mm de largo. Lodículas de 0,8

mm de largo. Ovario glabro.

Material estudiado:

IV Región: Baños del Toro. Quebrada del

Pasto. Espinosa (SGO).

Distribución geográfica:

Hasta el momento se le ha colectado en la

IV Región, provincia de Choapa y en la

provincia de Elqui. Crece en lugares hú-

medos a orillas de esteros de la alta cordi-

llera andina.

—

SS y ==

1,3mm

); B. Espiguilla (Isotypus); C. Ligula (Ricardi £ Matthei 261); D.

; E. Antera (Pisano 2841).

Fig. 13. F. magellanica: A. planta (Ricardi 8: Matthei 213

Transección de la lámina (Ricardi £ Matthei 213)

Fig. 14. F. : ¡ : igul ¡

g panda: A. Planta (Espinosa); B. Espiguilla (Espinosa); C. Lemma (Espinosa); D. Transección de la lámina

(isotypus).

12. FESTUCA NARDIFOLIA Griseb., Abh.

Kónigl. Ges. Wiss. Góttingen 24: 286.

1879. Typus: provincia Salta. Nevado del

Castillo. G. Hieronymus € P. Lorentz. Fl.

Arg. N. 84. (GOET, non vidi).

Iconografía: Saint-Yves 1927: Fig. 7. Túr-

pe 1969: Fig. 7. En el texto: Fig. 5: A; Fig.

IB FABBIC,D.

Cespitosa, con cañas floríferas uninodes

de 6-15 cm de largo. Láminas subsetáceas

a subjunceas de 0,4-0,7 mm de ancho,

arqueada de 0,2-2 mm de largo, glabras

en la cara abaxial y pubérulas en la cara

adaxial. Lígula de 2 mm de largo, pubes-

cente en el ápice, vaina glabra. Panoja es-

trecha de 1-2 cm de largo, ramas inferio-

res no mayores de 6 mm, pauciespigada,

(3-8). Espiguilla de 4-6 mm de largo, 1-3

floras. Gluma inferior 1-nervada de 2-2,5

mm de largo, la superior 3-nervada de

2,3-3,2 mm de largo. Lemma de 5-5,5 mm

de largo, acuminada, glabra sólo ciliada en

el ápice. Palea tan larga o apenas menor

que la lemma, ápice cubierto de breves

cilias. Raquilla de 1,2 mm de largo, glabra

O apenas pestañosa. Ánteras de 2,5 mm de

largo. Ovario glabro. Lodículas 0,8-0,9

mm de largo.

Material estudiado:

I Región: Camino de Putre a Chucuyo.

Km. 10. 4250 m.s.m. Marticorena, Matthei

£« Quezada 194 (CONC); Portezuelo de

Chapiquiña. Faldeos al lado norte del

Campamento 4400 m.s.m. Marticorena,

Matthei 8€ Quezada 114 (CONC); Camino

del Portezuelo de Chapiquiña a Putre.

Km. 18. 4250 m.s.m. Marticorena, Matthei

£ Quezada 134 (CONC); Las Cuevas 4400

m.s.m. Escobar 235 (CONC).

Distribución geográfica:

Para Chile se le cita por primera vez, ha-

biéndose ubicado hasta el momento sólo

en la alta cordillera de la provincia de Ari-

ca, por sobre los 4000 m de altura, donde

crece en terrenos arenosos y húmedos. En

Argentina, para donde fue originalmente

descrita, habita, de acuerdo a Túrpe

(1969: 216) en las altas cumbres desde

Jujuy hasta San Juan.

13. FESTUCA CHRYSOPHYLLA Phil., Ana-

les Mus. Nac. Chile 8: 88. 1891. Typus:

Prov. Tarapacá. “Desertum Atacama.

Prope Incahuasi lecta”. F. Phalippi (SGO),

vidi. Isotypus: B. Fotogr. CONC) - Festuca

deserticola var. chrysophylla (Phil.) St.-Y ves,

Candollea 3: 212. 1927.

Festuca juncea Phil., Anales Mus. Nac. Chi-

le 8: 88. 1891. Typus: Prov. Tarapacá.

Desertum Atacama. Inter Aguas Calien-

tes et Socaire lecta. c. 3200 m.s.m. Philipp:

(SGO, vidi. Isotypus: B. Fotogr. CONC) -

Festuca deserticola Phil. var. juncea (Phil.)

St.-Yves. Candollea 3: 209. 1927.

Iconografía: St.-Yves 1927: Fig. 40; Túr-

pe 1969: Fig. 14. En el texto: Fig. 5: D; Fig.

16: A,B,C,D.

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas erguidas uninodes de 30-

65 cm de alto. Vainas glabras, brillantes.

Lígula lobada de 0,3-0,5 mm de largo,

densamente pubescente en el margen. Lá-

minas subjunceas a junceas, de 0,7-1 mm

de ancho, 7-40 cm de largo, glabras en su

cara abaxial, sólo pubescente en el margen

basal de la hoja. Cara adaxial pubescente,

pelos a menudo sobresaliendo al exterior

por la base de la lámina. Panoja estrecha,

espiciforme de 6-10 cm de largo. Espigui-

llas 3-5 floras de 7-10 mm de largo. Glu-

mas lineares más largas que la mitad de la

lemma. La inferior 1-nervada, 4,5-5 mm

de largo, superior 3-nervada, 5-6,2 mm de

largo. Lemma acuminada, 5,3-6,5 mm de

largo. Glabra o sólo finamente pilosa en la

parte inferior, cerca del margen. Palea tan

o sólo poco más corta que la lemma. Care-

na y ápice pestañoso. Raquilla de 0,8-1

mm de largo, escabrosa. Lodículas 0,8-1

mm de largo. Ovario glabro.

Material estudiado:

I Región: Camino de Putre a Chucuyo.

Km. 4. 3750 m.s.m. Marticorena, Matthei 8e

Quezada 154 (CONC); Camino de Putre a

Chucuyo. Km. 8. 4100 m.s.m. Marticorena,

Matther € Quezada 191 (CONC); Camino

de Putre a Chucuyo. Km. 10. 4250 m.s.m.

Marticorena, Matthei « Quezada 193

(CONC); Camino de Arica al Portezuelo

D E

02 mm

EA A á>[ XA

Fig. 15. F. nardifolia: A. Planta (Marticorena, Matthei £ Quezada 114) B. Espiguil!a (Typus); C. Ligula (Marticorena,

Matthei £e Quezada 134); D. Transección de la lámina (Marticorena, Matthei £ Quezada).

de Chapiquiña. Km. 108. 3900 m.s.m. m.s.m. Al lado norte del Volcán. Zóllner

Marticorena. Matthei £ Quezada 74 758 (CONC); Estación Ascotán. 4000

(CONGO). Gamimo' de: Huara alBancosa. m.s.m. Marticorena, Matthei £ Quezada 422

Km. 137. 4600 m.s.m. Marticorena, Matthe (CONC).

« Quezada 372 (CONC); Camino de Hua- li 4 vu Me

ra a Cancosa. Kim. 108. Pampa Lirima Distribución geográfica:

4200 m.s.m. Marticorena, Matther £ Queza-

Planta alto andina de la I Región. Crece

da 340 (CONC); Volcán Ollagúe. 4500

sobre los 3700 m. en quebradas y partes

BENERAD AD

mM APO AE EN A P o z o > E Ñ A

: ÍA se A

' XA

HA,

0.1Imm

Fig. 16. F. chrysophylla: A. Lígula (Zóllner 758); B. Espiguilla (Typus); C. Transección de la lámina (Isotypus).

14.

planas de la cordillera andina. A menudo

se le encuentra también a orillas de sa-

lares.

Observación l:

La pilosidad del margen de la lemma es de

un carácter variable. Existen ejemplares

casi glabros, en tanto que otros son pilo-

sos, acercándose bastante a F. orthophylla.

FESTUCA KURTZIANA St.-Yves, Cando-

llea 3: 201. 1927. Typus: Mendoza. Cordi-

llera de Malalhue. Baños Viejos. 2. 1892,

F. Kurtz Herb. Arg. N. 7196 (B, vidi. Fo-

togr. CONC).

Festuca cabrerae Parodi, Revista Argent.

Agron, 20. 4: 200. 1953. Typus: Argenu-

na. Neuquén. Lago Huechulafquén. 17.

12. 1952. A.L. Cabrera 11284 (BAA, non

vidi).

Iconografía: Saint-Yves 1927: Fig. 31; Pa-

rodi 1953: Fig. 2 D, D”; Túrpe 1969: Fig.

11. En el texto: Fig. 5: F; Fig. 17:A,B,C,D.

Cespitosa. Innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas erguidas, uninodes, de

30-60 cm de alto. Vainas glabras o apenas

pestañosas en su base, violáceas. Lígula de

1 mm de largo, lobada, pestañosa. Lámi-

nas junceas, rígidas, geniculadas, de 1-1,2

mm de ancho y de 12 a 20 cm de largo.

Pestañosas en la base y superficie adaxial.

Panoja estrecha pauciespigada de 10-16

cm de largo. Espiguillas 3-5 floras, de 8 a

11 mm de largo. Glumas agudas, estrecha-

mente lanceoladas, finamente pubescen-

tes en sus márgenes, la inferior 1-nervada

de 4-4,5 mm de largo, la superior 3-

nervada, de 5-6 mm de largo. Lemma 5-

nervada de 6-7,5 mm de largo, múticas O

aristadas, escabrosas especialmente en sus

márgenes. Palea tan larga como la lemma

de ápice pestañoso. Lodículas 1 mm de

largo. Anteras de 2,5-3,5 mm de largo.

Ovario con el ápice híspido. Cariopse de 4

mm de largo lineal elíptico, pestañoso en:

el ápice. Hilo lineal ocupando las 2/3 par-

tes del fruto.

Material estudiado:

Región Metropolitana: Puente Alto. Entre

Lo Valdés y la Yesera. 2450 m.s.m. Ricar-

di. Marticorena 8 Matthei 871 (CONC);

Wet meadow at 9000 ft. End of Yeso Va-

lley. Mooney C 535 (CONC); Valle del Ye-

so. Entre agua Panimávida y agua termal

2800 m.s.m. Forma Champas grandes.

Schlegel 2573 (CONC); Valle del Yeso.

2750 m.s.m. Más arriba de aguas termales.

Vega húmeda. Schlegel 5890 (CONC).

VII Región. Camino de Laguna de Teno a

la junta con el camino internacional a Paso

Vergara. Km. 8. 2200 m.s.m. Marticorena

£ Matthei 981, 1058 (CONC); Entre paso

Pehuenches y Laguna del Maule. Ricard:

£€ Matthei 983 (CONC).

Distribución geográfica:

En Chile se extiende desde la Región Me-

tropolitana hasta la VII Región. A pesar

de ser una especie abundante en la cordi-

llera de esta zona, se le cita por primera

vez para el país. Originariamente fue des-

crita para Argentina, Mendoza. Parodi

(1953: 201) indica como área de distribu-

ción la alta cordillera Argentina de Neu-

quén y San Martín de Los Andes. Poste-

riormente Nicora (1978: 112) aumenta su

distribución hasta Río Negro.

Observación:

Se confirma la observación realizada por

Túrpe (1969: 228) en el sentido que la

anatomía de la hoja permite diferenciarla

claramente con especies afines. F. kurtz1a-

na posee haces libres, sin trabas escleren-

quimáticas, en tanto que F. acanthophylla y

F. scabriuscula poseen haces con trabas es-

clerenquimáticas.

. FESTUCA CONTRACTA T. Kirk, Trans,

$ Proc. New Zealand Inst. 27: 353. 1895.

- Typus: Hab. Macquarie Island. Hamilton

1894 (AK, non vidi).

Festuca erecta Dum. d'Urv., Fl. lles ma-

louin. 31. 1825. Typus: Illes Malouines (P,

vidi. Fotogr. CONC). Non Festuca erecta

(Huds.) Wallr., Sched. Crit. 35. 1822.

Fig. 17.F. kurtzana: A. Planta (Marticorena 8: Matthei 981); B. Espiguilla (H. £ B. Mooney C 535); C. Vaina (Marticorena €e

Matthei 1058); D. Transección de la lámina (Ricardi, Marticorena €e Matthei 871).

16.

Iconografía: Saint-Yves 1927: Fig. 9,10;

Parodi 1953: Fig. l a; Nicora 1978: Fig.

59; En el texto Fig. 18: A,B,C; Fig. 4: A.

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Canas floríferas, erectas, binodes de 15-40

cm de alto. Vaina glabra. Lígula breve, no

mavor de 0,5 mm, finamente ciliada en el

borde. Láminas setáceas o subjunceas de

0,3-0,7 mm de ancho y de 5-25 cm de

largo, glabras en la cara abaxial y pubes-

centes en la cara adaxial, ápice agudo. Pa-

noja estrecha, densiflora de 5 a 11 cm de

largo, con 20 a 40 espiguillas. Espiguillas

de 8 a 11 mm de largo, 3-5 flora. Glumas

lanceoladas, glabras, trinervadas, ápice

pestañoso o glabro, poco más cortas que el

antecio contiguo. La inferior de 5-8 mm

de largo y la superior de 7,5-9 mm de

largo. Lemma, escabrosa y finamente pes-

tañosa en los costados, de 5-6 mm de lar-

go, agudas o aristadas, aristas de 1-3 mm

de largo. Palea bicarenada, bidentada, tan

larga o poco menor que la lemma. Raqui-

lla pestañosa de 0,1-1,6 mm de largo. Lo-

dículas de 0,5-0,7 mm de largo. Fruto no

observado.

Material estudiado:

XII Región: Magallanes. Punta Arenas. Ce-

rros Cancha de Sky. 400-500 m.s.m. Ricar-

di 8e Matthei 318 (CONC); Cerro Mirador,

550-650 m.s.m. Forma pequeñas champas

en faldeos S-W, muy húmedos. Pisano

3363 (CONC).

Distribución geográfica:

Crece en Chile en el extremo austral en

turberas y suelos húmedos. Parodi (1953:

189) y Nicora (1978: 104) la citan también

para el extremo sur de Argentina. Especie

de amplia distribución en las regiones aus-

trales del mundo, de acuerdo a Moore

(1968: 151) crece además en Islas Fal-

kland, Georgia del Sur, Islas Kerguelen e

Isla Macquarie.

FESTUCA DESERTICOLA Phil., Fl. atac.

56. 1860. Typus: Desertum Atacama. Ad

aquam Varas Dictam 24''38" lat. m. 9700

p s.m. legi. (SGO, vidi. Isotypus B. Fotogr.

CONC).

Festuca paupera Phil., Anales Mus. Nac.

Chile 89. 1892. Typus: Desertum AÁtaca-

má. Ad Calalaste reperta 3700 m.s.m.

(SGO, vidi. Isotypus: B. Fotogr. CONC) -

Festuca deserticola Phil. var. paupera (Phil.)

St.-Y ves, Candollea 3: 211. 1927.

Festuca oligantha Phil. ex St.-Yves. Cando-

llea 3: 211. 1927. Nom. nud.

Iconografía: Saint-Yves 1927: Fig. 35; En

el texto; Fig. 5: B;. Fig: 18: D,:E.

Cespitosa, innovaciones intavaginales. Ca-

ñas floríferas erguidas, 1-2 nodes de 30-

35 cm de largo. Vainas glabras. Lígula

bilobulada de 0,2-0,3 mm de largo, pro-

fundamente ciliada en el ápice. Láminas

junceas de 1-1,5 mm de ancho y de 8-10

cm de largo, estriadas, glabras en la parte

abaxial y pubérula en la cara adaxial. Pa-

nojas estrechas, espiciformes de 4-6 cm de

largo, con ramas inferiores no mayores de

2 cm, pauciespiculadas, 4-10 espiguillas.

Espiguillas 8-9 mm de largo, 3-4 floras.

Glumas menores que la mitad del antecio

contiguo, la inferior 1-nervada de 3,5 mm

de largo, la superior 3-nervada de 3,5-4

mm de largo. Lemma de 6-7 mm de largo,

acuminada o brevemente aristada, glabra.

Palea poco menor que la lemma, ápice

ciliado. Raquilla de 0,7 mm de largo. Lodí-

cula de 0,7 mm. Ovario glabro. Antera de

3,5 mm de largo.

Material estudiado:

I Región: Arica. Camino de Putre a Chu-

cuyo. Km. 10. 4250 m.s.m. Marticorena,

Matthei 8 Quezada 134 (CONC); Iquique.

Camino de Huara a Cancosa. Km. 100.

Pampa Lirima 3700 m.s.m. Marticorena,

Matthei 8 Quezada 330 (CONC).

III Región: Camino a la quebrada de las

Vizcachas, a 34 Km. de la Puerta, 3100

m.s.m. Ricardi, Marticorena € Matthei 640

(CONC); Quebrada Salitral, en la vega,

3700 m.s.m. Marticorena, Matthei € Queza-

da 586 (CONC); Quebrada de Paipote.

Extremo inferior Vegas La Junta. 2900

m.s.m. Marticorena, Matthet £ Quezada 514

(CONC).

Fig. 18. F. contracta: A. Planta (Ricardi £ Matthei 318); B. Espiguilla (Typus); C. Transección de la lámina (Ricardi $

Matthei 318); F. deserticola: D. Espiguilla (

Typus); E. Transección de la lámina (Isotypus

Distribución geográfica:

Crece en los lugares húmedos de las regio-

nes l y III. Generalmente se le encuentra

en los márgenes de arroyos de la alta cor-

dillera andina entre los 2900 a 4250

m.s.Mm.

También habita esta especie la alta cor-

dillera de Argentina como lo confirma Ca-

brera (1957: 377) y el material colectado

por Philippi en Calalaste.

. FESTUCA PALLESCENS (St.-Yves) Paro-

di, Revista Argent. Agron. 4: 206. 1953.

Typus: Patagonie. Gouv. de Sta. Cruz: au

Río Coyle, Dauber 173 (G, non vidi) - Festu-

ca gracillima ].D.Hook.var monticola (Phil.)

St.-Yves subvar. pallescens St.-Yves, Can-

dollea 3: 296. 1927.

Iconografía: Saint-Yves 1927: Fig. 16, 90:

Parodi 1953: Fig. 4 A-E; Boelcke 1957:

Fig. 7 D; Pyykkó 1966: Fig. 126; Latour

1970: Fig. 41; Nicora 1978: Fig. 68. En el

texto: Fig. 4:E; Fig. 19:A,B.

Nombre vulgar: Coirón dulce.

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas erguidas, 1-2 nodes, 30-

76 cm de alto. Vainas glabras. Láminas

subjunceas a junceas, 0,7-1,1 mm de an-

cho, 5-15 cm de largo. Lígula lobada, 0,5

mm de largo, bordes pestañosos. Panoja

especiforme, ramificaciones inferiores no

mayores de 3 cm de largo, espiguillas 5-7

floras, 9-15 mm de largo. Glumas lanceo-

lado-acuminadas, glabras. La inferior an-

gosta, 1-nervada, 4-5 mm de largo, la su-

perior lanceolada, 3-nervada, 5,5-7,5 mm

de largo. Lemma glabra, escabrosa en el

ápice, 6,5-9 mm de largo, arista 1-3 mm de

largo. Palea bidentada, carenas breve-

mente pestañosas. Raquilla 1-1,5 mm de

largo. Anteras 2,5-3 mm de largo. Lodícu-

las de 0,5 mm de largo. Ovario con peque-

ños pelos en el ápice.

Material estudiado:

XI Región: Río Cisnes. Ricardo € Matthei

518 B (CONC); Coihaque, Montero 5482

(MONTERO).

XII Región: Las Cumbres. Baguales. 550-

850 m.s.m. Ricardi £ Matthei 430 (CONC);

18.

Cerro Guido. Estancia Guido. Pfister € Ri-

cardi (CONC); Estancia Cerro Guido, ve-

ga. Magens (HIP); Cerro Castillo. Magens

(HIP); Tope Sierra Cazador. Magens

(HIP); Puerto Munición. A orillas de este-

ro. Ricard: £ Matthei 61 (CONC); Estancia

Laguna Blanca. Morrison (HIP).

Distribución geográfica:

En Chile se le ha encontrado en las Regio-

nes XI y XII, distribución bastante res-

tringida para nuestro país, si se le compa-

ra con Argentina donde de acuerdo a Pa-

rodi (1953: 208) crece desde la alta cordi-

llera de Mendoza hasta el sur de Santa

Cruz.

Se desarrolla preferentemente en luga-

res húmedos y protegidos donde forma

asociaciones puras. La pobreza de tejido

mecánico de las hojas determina suavidad

en las mismas, lo cual es la causa de su alta

palatabilidad. Sin lugar a dudas es una de

las buenas forrajeras naturales de nuestra

zona austral.

FESTUCA TECTORIA St.-Yves, Cando-

llea 3: 240. 1927. Typus: Perú. Prov. Aya-

cucho. Coracora. Weberbauer Fl. Per. N

5811 (B, vidi).

Iconografía: Fig. 7:D; Fig. 1:C,D,E.

Cespitosa. Cañas floríferas binodes, er-

guidas o nutantes de 80 a 100 cm de alto.

Vainas finamente pubescentes. Lígula

breve de 1 mm de largo, densamente cilia-

da. Láminas planas, 1,5-3 mm de ancho y

de 10-25 cm de largo. Panícula laxa de

15-20 cm de largo. Espiguillas de 7-9 mm

de largo, 3-7 floras. Gluma inferior 1-

nervada de 2-3, 2 mm de largo, la superior

3-nervada, 3,5-4,6 mm de largo. Raquilla

de 1-1,5 mm de largo, escabrosa. Lemma

de 6-6,5 mm de largo, brevemente arista-

da y de superficie finamente escabrosa.

Palea poco menor que la lemma. Lodícu-

las de 1 mm de largo. Anteras de 1-3 mm

de largo. Ovario no observado.

19:

Material estudiado:

I Región: Arica. Camino al Portezuelo de

Chapiquiña. 3360 m.s.m. Ricardi, Martico-

rena € Matther 163, 165, 188 (CONC).

Distribución geográfica:

Sólo se le ha encontrado para la cordillera

de Arica, entre los 3100-3360 m.s.m.,

donde crece en quebradas asociada a Poly-

lepis tomentella Wedd., Dunalia spinosa

(Meyer) Dammer, Diplostephium meyena

Wedd., Bomarea involucrosa (Herb.) Baker,

Cardionema ramossisimum (Weinm.) Nels. 8c

Macbr.

Observación:

Planta descrita originariamente para Pe-

rú. Para Chile se le cita por primera vez.

FESTUCA HYPSOPHILA Phil., Anales

Mus. Nac. Chile 8: 89. 1891. Typus: Ad

Colorados, Leoncito, Ampexa, Huasco

frequens c. 3800 m.s.m. F. Philipp. Tara-

pacá (SGO. Isotypus B. Fotogr. CONC) -

Festuca deserticola Phil. var hypsophila (Phil.)

St.-Yves, Candollea 3:210. 1927.

Iconografía: Saint-Yves 1927. Fig. 38;

Túpe 1969. Fig. 28. En el Texto: Fig. 7:C;

Fig. 20:A,B y C.

Cespitosa, con innovaciones intravagina-

les. Cañas floríferas erguidas, binodes de

70-90 cm de alto. Vainas glabras, brillan-

tes. Lígula no mayor de 1 mm, densamen-

te ciliada. Láminas junceas de 1-1,2 mm

de ancho y de 15-60 cm de largo, plega-

das, acuminadas, glabras y brillantes en su

cara abaxial, pubescentes en su cara ada-

xlal. Panoja de 10-20 cm de largo, estre-

cha. Espiguillas de 8-14 mm de largo. Glu-

mas lineales, generalmente menores que

la mitad del antecio, la inferior 1-nervada

de 2,8-4,5 mm. La superior 3-nervada de

4,5-6,5 mm de largo. Lemma de 6-8 mm

de largo, acuminada, ápice a menudo se-

toso. Palea menor que la lemma y con

carenas pestañosas. Raquilla escabrosa de

1,2-1,9 mm de largo. Lodículas 0,6 mm de

largo. Ovario glabro. Anteras de 3-3,5

mm de largo.

20.

Material estudiado:

II Región: San Pedro de Atacama. Saireca-

bur. 4000 m.s.m. Zóllner (CONC).

IIT Región: Camino de Potrerillos al Salar

de Maricunga, 47 Km al interior del Tran-

que la Ola. 4050 m.s.m. Ricarda, Marticore-

na 8e Matthes 1631 (CONC); Camino de

Potrerillos al Salar de Maricunga, 8 Km al

interior del Tranque la Ola. Orillas del río

la Ola. 3700 m.s.m. Ricard, Marticorena 8e

Matthe: 1605, 1608 (CONC); Camino In-

ternacional a Tinogasta. Aguada Caballo

Muerto. 4050 m.s.m. Ricarda, Marticorena

8c Matther 1671 (CONC).

Distribución geográfica:

Crece en lugares húmedos de la alta cordi-

llera andina de la II y 111 Región. Tam-

bién ha sido señalada para Argentina,

Túrpe 1. c. cita material proveniente de

Jujuy.

FESTUCA ARUNDINACEA Schreb., Spic.

Fl. Lips. 57. 1771. Typus: In prato acclivi

hinter dem Biniz, loco humido. (M, non

vidi) — Festuca elatior L. var. arundinacea

(Schreb.) Wimm., Fl. Schles. 3:59. 1857 —

Festuca elatior L. ssp. arundinacea Hack.,

Bot. Centralbl. 8: 407. 1881.

Festuca elatior L. Sp. Pl. 1: 75. 1753; sensu

stricto: nomen ambiguum rejeciendum.

Ver Terrel 19671391

Iconografía: Hitchcock 1951: Fig. 59;

Hubbard 1959: 122; Parodi 1959: Fig. 32

A; Nicora 1978: Fig. 55; Aguila 1979:

Lam. 30. En el texto: Fig. 5: F; Fig. 21:A.

Cespitosa con innovaciones intravagina-

les. Cañas floríferas 2-5 nodes, erguidas

de 45-180 cm de alto. Vainas glabras. Lí-

gula de 2 mm de largo, membranosa, pes-

tañosa en el ápice. Aurículas angostas, cl-

liadas en el margen. Láminas planas de

4-8 mm de ancho y 10 a 60 cm de largo.

Panícula de 10-50 cm de largo, amplia,

ramificaciones inferiores en pares, la más

corta de ellas con 3 a más espiguillas. Espi-

guillas 5-7 floras de 10-18 mm de largo.

Gluma hasta la mitad o apenas mayor o

Fig. 19. F. pallescens: A. Espiguilla (Pfister 8 Ricardi); B. Transección de la lámina (Ricardi £: Matthei 430); F. tectoria: c.

Espiguilla (Ricardi, Marticorena 8 Matthei 188); D. Lígula (Ricardi, Marticorena 8 Matthei 165); E. Transección de la

lámina (Ricardi, Marticorena 8: Matthei 163).

Fig. 20.F. hypsophila: A. Espiguilla (Typus): B. Lígula (Ricardi, Marticorena ge Matthei 1671); C. Transección

de la lámina (Ricardi, Marticorena 8: Matthei 1608).

menor que el antecio contiguo. La inferior

I- nervada de 3-6 min de largo, la superior

3 nervada de 4,5-7 mm de largo. Lemma

de 6-9 mm de largo, glabra a excepción

del margen. Mútica o con una pequeña

prolongación del nervio medio. Palea tan

larga como la lemma. Raquilla 1 mm de

largo. Lodículas 0,6 mm de largo. Anteras

3-4 mm de largo. Cariopse 3,5 mm de

largo, hilo 2 mm.

Material estudiado:

VIT Región: Fundo Copihue, potrero.

Schlegel 1759 (CONC).

VIIT Región: Laja. Tarpellanca Sur. Mat!-

her (CONC). X Región: Valdivia. Isla Teja.

Jardín Botánico. U. Austral. Montaldo

4340 (CONC); Chiloé. Piruquina. Junge

(CONC).

Observación l:

Aguila (1979: 222) indica como probable

fecha de introducción de esta especie, el

año 1904. En Estados Unidos se conocen

dos variedades: la alta, originaria de Ore-

gon y la variedad K 31, originaria de Ken-

tucky. Esta última ha sido profusamente

cultivada en la zona central y sur de nues-

tro país. Como todas las especies de este

género no soporta altas temperaturas,

lo que impide su normal desarrollo en los

meses de verano. Al existir temperaturas

adecuadas como sucede en las estaciones

de otoño y primavera, alcanza elevados

rendimientos. No es exigente en cuanto a

terrenos, se desarrolla bien tanto en terre-

nos arcillosos como arenosos, respondien-

do favorablemente a fuertes dosis de ni-

trógeno.

Observación II.

Es muy probable que en Chile crezcan

otras especies muy afines a Festuca arundi-

nacea, de ahí que se ha estimado conve-

niente agregar una clave que de acuerdo a

Hubbard (1959: 36) permite diferen-

ciarlas:

1. Aurículas presentes. :

2. Ramificaciones de la panícula en pares,

la más corta de ellas con 1-2 espiguillas.

Aurículas glabras en el mar-

gen F. pralensis

Huds.

. Ramificaciones de la panícula

en pares, la más corta de ellas

con 3 o más espiguillas. Aurí-

culas con pequeños pelos en el

Pr FF. arundinacea

Schreb.

margen

F. altissima

All.

. Aurículas A

. FESTUCA ARGENTINA (Speg.) Parodi,

Physis (Buenos Aires) 11: 498. 1935 —

Poa argentina Speg., Revista Fac. Agron.

Univ. Nac. La Plata 3: 584. 1897. Typus:

Hab. ad margim orientalem Lago Argen-

tino, anno 1884 (LP, non vidi).

Festuca cavillieri St. -Yves, Candollea 3:

192. 1927. Typus: Chili: Territoire de

Pehuenche. Lechl. pl. chil. edit. Hoche-

nacker N. 3085. (G, non vidi. Isotypus: P.

Fotogr. CONC).

Iconografía: Saint-Yves 1927: Fig. 27; Pa-

rodi 1950: Fig. 2,3,4; Parodi 1953: Fig. 6;

Boelcke 1957: Fig. 7B; Pyykó 1966: Fig.

138; Latour 1970: Fig. 39; Nicora 1978:

Fig..70. En el texto: Fig. 7:B; Fig. 21 B.

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas 2-nodes, erguidas, tiesas,

de 60-100 cm de alto. Vainas abiertas, gla-

bras. Lígula brevísima, pestañosa. Lámi-

nas junceas de 1-1,5 mm de ancho y de

20-30 cm de largo. Panoja de 10-15 cm de

largo. Espiguillas 4-7 floras de 10-12 mm

de largo. Gluma inferior 1-nervada de 6-7

mm de largo, la superior 3-nervada de 7-8

mm de largo. Lemma de 8-9 mm de largo,

glabra, sólo con pelos cerca de la base.

Palea finamente pestañosa sobre las care-

nas, tan larga como la lemma. Anteras de

3-4 mm de largo. Ovario pubescente en el

ápice.

Material estudiado:

XI Región. Río Cisnes. Lailhacer. (SGO).

Distribución geográfica:

De acuerdo a Parodi (1953: 218) es una

especie de amplia distribución en Argenti-

na. Se extiende en este país desde San

Rafael (Mendoza) hasta el Lago Argenti-

no (Sta. Cruz). Crece tanto en la cordillera

como en la precordillera de los Andes,

donde se le conoce como coirón negro,

coirón grande, coirón falso, coirón del

huevú, coirón duro y huecú. Para Chile

pareciera ser, por el material de herbario

existente, una especie escasa, ya que hasta

el momento sólo se conoce el material de

Lechler y Lailhacer.

Observación l:

De acuerdo a las observaciones de Parodi

(1953: 217) las flores pueden ser dioicas,

hermafroditas, o polígamas, observacio-

nes que no son compartidas por Nicora

(1978: 119). Desafortunadamente el esca-

so material estudiado no permite dar una

opinión propia al respecto.

Observación Il.

Parodi (1950: 169) incluye a esta especie

dentro de las gramíneas tóxicas para el

ganado, manifestando al respecto que

tanto a caballos, vacunos como a las ovejas

les provoca contracciones musculares, ri-

gidez, parálisis y hasta la muerte.

0,2 mm

——

22. FESTUCA CIRROSA (Speg.) Parodi, Re-

vista Argent. Agron. 20(4): 190. 1953 —

Festuca erecta Dum. D'Urv. var. cirrosa

Speg., Anales Mus. Nac. Hist. Nat. Bue-

nos Aires. Typus: Tierra del Fuego. Isla

de los Estados. Puerto Roca. Spegazzmi

1882 (LP, non vidi).

Festuca longidiurna Parodi, Revista Argent.

Agron. 20(4): 214. 1953. Typus: Argenti-

na. Tierra del Fuego. Isla de los Estados.

Puerto Cook. Castellanos (BA, non vidi).

Iconografía: Parodi 1953" FR Bb:

Fig. 5: A-H, Nircora 1978: Fig. 63. En el

texto: Fig. 6:B; Fig. 22: 'A-BuEs

Cespitosa con innovaciones intravagina-

les. Cañas floríferas 2-3 nodes, nutantes,

30-90 cm de alto. Vainas glabras. Lígula

membranosa, oblonga, 2-5 mm de largo.

Láminas junciformes, ápice agudo, 0,85-1

mm de ancho, 20-40 cm de largo. Ramifi-

caciones inferiores 2-7 cm de largo. Espi-

guillas 15-18 mm de largo, 6-8 floras. Glu-

mas lanceolado-acuminadas, ligeramente

pubescentes en la parte superior, la infe-

rior 1-nervada, 6-9 mm de largo, la supe-

02mm

; Fig. 21. F. arundinacea: A. Transección de la lámina (Matthei) F. argentina: B. Transección de la lámina (Lailhacer).

23,

rior 3-nervada, 7-10 mm de largo. Lemma

8-10 mm de largo, lanceolada, acumina-

da, ápice y borde finamente pestañoso.

Arista variable de 1-5 mm de largo. Palea

bidentada, 7,5-8 mm de largo. Lodículas

1,5 mm de largo. Anteras de 3-3,5 mm de

largo. Ovario con pequeñas cerdas en el

ápice. Cariopse no fue observado.

Material estudiado:

XII Región: Caleta-Martial. Isla Herschel.

Forma champas en asociación herbácea

costera. Pisano 3417 (CONC); Puerto

Henry. Isla Riesco. Península Córdova.

En asociación herbácea costera Pisano

2618 (CONC); Bahía Morris. Isla Capitán

Aracena. En lugares altos y secos de la

asociación herbácea costera. Pisano 3304

(CONC).

Distribución geográfica:

Especie de distribución limitada, sólo se le

conoce en Chile para Tierra del Fuego.

Observación:

Esta especie sobresale por su larga lígula,

la cual puede alcanzar hasta 5 mm de

largo.

FESTUCA TUNICATA E. Desv. in Gay Fl.

Chil. 6: 434. 1854. Typus: Quillota. Berte-

ro 995 (P, vidi. Fotogr. CONC).

Festuca robusta Phil., Linnaea 29: 98. 1858.

Typus: In collibus prope Santiago in ru-

pium fissuris (SGO vidi. Fotogr. CONC).

Festuca asperata Phil., Linnaea 33: 296.

1864. Typus: Prope Illapel ab orn. Land-

beck reperta (B, vidi. Fotogr. CONC).

Festuca berteroniana Steud., Syn. Pl. Glum.

1: 311. 1854. Typus: Hrbr. Bertero N.

999. Chili (P, vidi. Fotogr. CONC) — Fes-

tuca tunicata E. Desv. forma scabra St.-

Yves, Candoliea 3: 184. 1927.

Festuca coiron Steud., Syn. Pl. Glum. 1:

312. 1854. Typus: Festuca N. 269 8 995.

Hrbr. Chile (P, vidi. Fotogr. CONC).

Festuca barraz Muñoz, Agric. Técn. Chile

8: 83. 1948. Typus: Prov. Coquimbo. Bos-

que de Fray Jorge. Aprox. 500 m.s.m. En

una quebrada profunda de la ladera Po-

niente. Más o menos abundante. 25-30)

Nov. 1940. Muñoz £ Coronel 1393 (SGO,

non vidi. Isotypus: SGO N. 095396 vidi).

Iconografía: Muñoz 1948: Fig. 13, 14, 15.

En el texto: Fig. 5: E; Fig. 22: D,E.

Densamente cespitosa, innovaciones in-

travaginales. Cañas floríferas erectas, 50-

100 cm de largo. Nudos 2-4, glabros. Vai-

na por lo general finamente escabrosa.

Lígula glabra finamente ciliada en el ápi-

ce, 0,5-1,5 mm de largo. Láminas junceas

a planas, 1-3 mm de ancho, 20-50 cm de

largo, glabra o finamente escabrosa en su

cara abaxial. Cara adaxial pubescente. Pa-

noja densa, erecta 7-25 cm de largo con

30-100 espiguillas. Espiguillas de 10-14

mm de largo, 4-6 floras. Glumas por lo

general mayores que la mitad del antecio

contiguo, escabrosas en el dorso, la infe-

rior 1(3) nervada, 4,5-6,9 mm de largo, la

superior 3(5) nervada, 6,2-7,8 mm de lar-

go. Raquilla 0,6-1,2 mm de largo. Lemma

6-9 mm de largo, escabrosa, mútica o bre-

vemente aristada. Palea tan larga como la

lemma, carenas escabrosas. Anteras 3,5

mm de largo. Lodículas 1 mm de largo.

Ovario con 2-5 cerdas en el ápice. Cariop-

se 1 mm de largo con el hilo cubriendo su

3/4 partes.

Matenal estudiado:

IV Región. Cuesta Buenos Aires. Behn

(CONC); Cuesta Buenos Aires, Ricard,

Marticorena € Matthei 1696 (CONC);

Cuesta Buenos Aires. Minerales El Tofo

350 m.s.m. Behn (CONC); Cuesta Buenos

Aires 420-500 m.s.m. Ricardi, Marticorena

£« Matthei 1806, 1809 (CONC); Cordillera

Ovalle. Falda Morro Blanco. 2200 m.s.m.

Jules 1579 (CONC); Carretera Panameri-

cana. Entre Pichidangui y Los Vilos. Mar-

ticorena €e Matthei 60 (CONC); Pichidan-

gui— Los Vilos. Silla del Gobernador. 600

m.s.m. Zóllner (CONC); Carretera Pana-

mericana. 8 Km. al norte de los Vilos. Mar-

ticorena €e Matthei 116 (CONC); Huente-

lauquén. files 2684, 2694 (CONC). En el

24.

Matorral falda N. Centinela. files 4586

(6MNC).

V Región: Carretera Panamericana. 5 Km.

al norte de Longotoma. Ricardi, Marticore-

na KX Matther 1828 (CONC). Región Metro-

politana: Cuesta La Dormida. Lado este

camino a Capilla Calev hasta el paso. Schle-

gel 1731 (CONC); Cerro Manquehue.

Cumbre 1500-1700 m.s.m. En champas

gruesas, abundante. Schlegel 3050

(CONC); Cerro Renca, cerca de la cum-

bre. Looser 2790 (CONC); Colina cerros al

norte de los Baños. 1000 m.s.m. Behn

(CONC); Valle Maipo. San Gabriel. Bos-

que de Cipreses 1490 m.s.m. Schlegel 4429

(CONC).

Distribución geográfica:

Su distribución comprende las Regiones

IV, V y Región Metropolitana. Se le en-

cuentra desde las cercanías del mar hasta

la precordillera andina. Es la única especie

que posee un rango tan amplio de distri-

bución.

Observación l.

Especie polimorfa, el tamaño de las glu-

mas en la mayoría de las especies es mayor

que la mitad de los antecios contiguos,

este carácter no es en todas constante, en-

contrándose también especies en las cua-

les éstas son menores que el antecio con-

tiguo.

FESTUCA ACANTHOPHYLLA E. Desv. in

Gay, Fl. Chil. 6: 434. 1854. Typus: Cordi-

lleras altas de Cauquenes, Valle de los Ci-

preses, en la provincia de Colchagua. Leg.

Gay (P, vidi, Fotogr. CONC).

Festuca desvauxti Phil., Linnaea 33: 295.

1864. Typus: Ad radicem Andium in

prov. Colchagua in elevatione 2-3000 ped.

s.m. crecit, unde attulit orn. Landbeck

(SGO, vidi. Fotogr. CONC).

Festuca acuta Phil., Anales Universidad de

Chile 94: 175. 1896. Typus: In Andibus

provincia Talca loco dicto Blanquillo inve-

nit F. Philippi (SGO. vidi. Fotogr. CONC).

az:

Festuca desvauxa Phil., var. ampla St.-Y ves,

Candollea 3: 298. 1927. Typus: Chili.

Prov. de Curicó: Hacienda Monte Gran-

de, 1700 m. Werdermann Pl. Chil. N* 520

(G, non vidi). :

Iconografía: St.-Yves 1927. Fig. 25. Túr-

pe: 1969:"Fig.-27. En el texto Pio E:

Fig-233. BE y. D.

Densamente cespitosa con innovaciones

intravaginales. Cañas floríferas binodes,

erguidas, tiesas de 50-90 cm de largo. Vai-

nas por lo general violáceas. Lígula lobula-

da de 0,8-1 mm de largo, finamente laci-

niada en su parte central. Láminas junceas

de 1-1,5 mm de ancho y de 8-35 cm de

largo, glabras y brillantes en su parte ex-

terna. Pubescentes en su parte interna.

Panícula de 8-15 cm de largo, pluriespiga-

da. Espiguillas 4-7 floras, de 9-17 mm de

largo. Glumas hasta la mitad o más lar-

gas que el antecio contiguo. La inferior

l-nervada de 3,5-4 mm de largo, la supe-

rior 3 (5) nervada de 4-5,5 mm de largo.

Lemma de 6,5-8 mm de largo, tan larga

como la palea, mútica glabra en toda su

superficie a excepción del margen que es

escabroso. Palea bicarenada, carenas fina-

mente pestañosas. Raquilla de 1,5-2 mm

de largo, finamente setosas. Lodículas de

1,2 mm de largo. Ovario con el ápice cu-

bierto de breves y ralas cerdas. Anteras de

3,5-5 mm de largo. Cariopse adnado a la

lemma, lineal de 4 mm de largo, hilo 3

mm, embrión de 0,5-0,6 mm de largo.

Material estudiado:

IV Región: Río Torca. 2300 m.s.m. Jules

4090 (CONC); Cerro Loica. Matas más o

menos dispersas, falda asoleada. 2000

m.s.m. files 4721 (CONC); Río Molles

2000 m.s.m. Jiles 2879 (CONC); Cordille-

ra de Combarbalá. Potrero grande, fal-

deos arenosos. Jiles 4840 (CONC); Río Ne-

gro. 2400 m.s.m. Abundante en los fal-

deos. Jiles 4186 (CONC); Yerba Loca y

otros lugares. Faldeos 2000-2660 m.s.m.

files 4210 (CONC); Almendrillo. 1700-

1800 m.s.m. Marticorena €e Matthei 512

(CONC).

Fig. 22. F. cirrosa: A. Espiguillas; B. Lígula (Pisano 3304); C. Transección de la lámina. F. tunicata: D. Espiguilla (Typus F.

berteroniana); E. Transección de la lámina (Ricardi, Marticorena € Matthei 1806).

V Región: Los Andes. Interior de Río Colo-

rado. Los Maitenes 2500 m.s.m. Zóllner

162 (VALPARAISO); Cerro El Roble.

Punta Imán. 2000 m.s.m. Garaventa 2262,

2261 (CONC).

Región Metropolitana: San Gabriel. 1750

m.s.m. Montero 539 (MONTERO).

VI Región: Vegas del Flaco. 1900 m.s.m.

Marticorena 8e Matthei 726 (CONC); Ter-

mas del Flaco. 1700 m.s.m. Montero 6009,

7093 (MONTERO); Camino de San Fer-

nando a Vegas del Flaco. Km. 70. 1600

m.s.m. Marticorena € Matthei 745 (CONC).

VIT Región: Camino de Laguna de Teno a

la junta con el camino internacional a Paso

Vergara. Km. 2. 2550 m.s.m. Marticorena

8 Matthei 938 (CONC); Camino de Curicó

a Paso Vergara, 3 Km. antes del límite.

2350 m.s.m. Marticorena € Matthes 1050

(CONC); Camino de Curicó a Paso Verga-

ra, 4 Km. antes del límite 2250 m.s.m.

Marticorena 8: Matthei 1065 (CONC); Ca-

mino de Laguna de Teno a junta con el

camino internacional a Paso Vergara. Km.

4. 2450 m.s.m. Marticorena 8e Matthei 950

(CONC); Camino de Curicó a Paso Verga-

ra. Loma El Viento. Km. 94. 2150 m.s.m.

Marticorena 8e Matthei: 1065 (CONC); Paso

Pehuenches. 2500 m.s.m. Ricardi, Martico-

rena 8e Matthei 902 (CONC); Laguna del

Maule 2190 m.s.m. Schlegel 3461, Schlegel

3495, Schlegel 3458 (CONC).

Distribución geográfica:

Se extiende esta especie en Chile desde la

IV a VII Región. Crece en terrenos areno-

sos o arenoso-pedregosos de la precordi-

llera y cordillera andina. Para Argentina,

bajo el nombre de su sinónimo: F. desvau-

xi2, la cita Túpe (1969: 264) para el oeste

de la provincia de Mendoza y Nicora

(1978: 118) indica que en el Depto. de

Minas, Neuquén, forma grandes matas

muy punzantes en mallines de altura y en

laderas pedregosas.

Observación l:

Las hojas de esta especie son duras y pun-

zantes, no presentando gran utilidad co-

mo forrajera. Pero debido a la gran canti-

dad de granos que produce, es una valiosa

20):

fuente de alimento para la fauna autócto-

na, en especial de roedores.

Observación II:

En la descripción original, E. Desvaux 1.c.

describe el ovario como glabro, pero de

acuerdo a Sint-Yves 1.c. y al material estu-

diado, el ovario posee pequeñas cerdas en

el ápice.

FESTUCA MORENENSIS Matthei nov.

spec. Typus: Chile II Región. Prov. Anto-

fagasta. Cumbres al lado sur del morro

Moreno. 1000 m.s.m. 23”29' S. 70%34'W.

22.10.1965 Ricardi, Marticorena € Matthei

1407 (CONO).

Planta caespitosa. Innovationes intravagi-

nales. Culmi erecti, 32-36 cm alti, glabri.

Vaginae glabrae. Lígula brevissimae, 0,2-1

mm longae, biauriculatae, apice minutissi-

me ciliolate. Laminae setaceae, 3-20 cm

longae. Panicula angusta, 10 cm longa,

rami 1-5 cm longae. Rhaquis pilis minutis-

simis. Spiculae 3-6 florae, 8-10 mm lon-

gae. Gluma dimidia longior quam lemmae

laterales. Gluma 1: Uninervia, 4,5-5 mm

longa. Gluma Il: trinervia, 5,5-6 mm lon-

ga. Raquilla 1 mm longa. Lemma 6-5,5

mm longa, acuminata, carinis minutissi-

mis ciliolatis. Palea 6 mm longa, carinis

brevissimis ciliatis. Lodículas 0,2-0,5 mm

longae.

Planta cespitosa, innovaciones intravagi-

nales. Tallos erectos, 32-36 cm de alto,

glabros. Vainas glabras. Lígula brevísi-

ma, 0,2-1 mm de largo, biauriculada. Api-

ce finamente ciliado. Láminas setáceas, 3-

20 cm de largo, 0,6-1 mm de ancho. Inflo-

rescencia angosta, 14-18 cm de largo, ra-

mas de 1-5 cm de largo. Raquis finamente

piloso. Espiguillas 3-6 floras, 8-10 mm de

largo. Glumas mayores que la mitad del

antecio contiguo. La inferior, uninervada,

4,5-5 mm de largo, la superior 3-nervada,

5,5-6 mm de largo. Raquilla 1 mm de lar-

go. Lemma 6-6,5 mm de largo, acumina-

da. Palea 6 mm de largo, carenas breve-

mente ciliadas. Lodículas de 0,2-0,5 mm

de largo.

Iconografía: Fig. 6: A; Fig. 24: A.

Fig. 23. F. acanthophylla: A. Planta (Marticorena £ Matthei 745); B. Vaina (Marticorena £ Matthei 745): C. Espiguilla

(Typus); D. Transección de la lámina (Marticorena € Matthe1 745).

20:

Observaciones:

Hasta el momento sólo se conoce el mate-

rial tipo. Especie afín a F. scabriuscula de la

cual se diferencia por su lemma de menor

tamaño, sus láminas más delgadas y por la

estructuras de la epidermis abaxial. Sus

células cortas van siempre solitarias mien-

tras que en F. scabriuscula ellas siempre se

presentan formando un par.

FESFUCA SCABRIUSCUEA Phil, Lin-

naea 29: 98. 1858. Typus: In collibus apri-

cis provinciea Valdiviae inveni (SGO, vidi.

Fotogr. CONC). Philippi en Anales Univer-

sidad de Chile 94: 176. 1896 corrige el lugar

de colección e indica: “por un error he

atribuido a F. scabriuscula una patria falsa;

no es de las pampas de Valdivia, sino de la

región alpina de Chillán” — Festuca robusta

Phil. var. scabriuscula (Phil.) St.-Y ves, Can-

dollea 3: 187. 1927.

Festuca pascua Phil., Anales Uniwversidad de

Chile 94: 176. 1896. Typus: In pascuis

provinciae Valdivia ocurrit, incólis coiron,

sicut multa alia gramina caespitosa. (SGO,

vidi, Fotogr. CONC).

Festuca steudelu Phil., Anales Unwersidad de

Chile 94: 177. 1896 Typus: In Andibus

prov. Valdiviae ab Otto Philipp: lecta, et

quidem loco dicto Boquete de Trancacu-

ra. (SGO, vidi).

Festuca neuquensis St.-Yves var. aspera St.-

Yves. Candollea 3: 300. 1927 Typus: Rep.

Argentina, Gobernación de Neuquén; Pi-

no Hachado, valles en la región de Arauca-

ria araucana. Parodi 3175 (BAA, non vidi).

Iconografía: Parodi: Fig. 7A,A”; St.-Yves

1927: Fig. 24. Nicora 1978: Fig. 66. En el

texto: Rip; 6:11); "Big.:24: B,C:

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas nutantes de 30-70 cm de

largo, binodes, nudos glabros. Vainas gla-

bras. Lígula de 0,2-0,5 mm de largo bilo-

bulada. Láminas setáceas de 0,4-0,8 mm

de ancho y de 10-40 cm de largo, escabro-

sas en la cara abaxial. Panoja nutante, la-

xa, 6-12 cm de largo, con 20-25 espigui-

llas, éstas de 10-15 mm de largo, 3-9 flo-

ras. Glumas poco mayor que la mitad del

antecio contiguo, la inferior 1(3) nervada

de 3,2-5,5 mm de largo, la superior 3 ner-

vada de 4-6,5 mm de largo. Raquilla esca-

brosa de 1,2 mm de largo. Lemma de 7-

8,5 mm de largo, escabrosa y a menudo

aristada, ésta de 1,5-2 mm de largo. Pálea

tan larga como la lemma, carenas escabro-

sas. Lodículas de 1 mm de largo. Anteras

de 3-4 mm de largo. Cariopse de 3-4 mm

de largo, hilo más largo que la mitad del

fruto.

Material estudiado:

VIII Región: Ñuble. A 30 Km. de San Fa-

bián a la cordillera. 1700 m.s.m. Matthei

291 (CONO).

IX Región: Mininco. Montero 4707 (MON-

TERO); Termas de Río Blanco. Pfister

(CONC); Termas Río Blanco. 1200

m.s.m. Montero 3693, 4412 (MONTERO);

Termas Río Blanco. 1500 m.s.m. Montero

2728 (MONTERO); Camino de Lonqui-

may al Paso Pino Hachado. Km. 13. 950

m.s.m. Raicardi 8 Marticorena 5656/1817

(CONO); El Saltillo. 2 Km. antes del Paso

Pino Hachado. 1800 m.s.m. Ricard: 82

Marticorena 5680/1841 (CONC); Valle del

Lonquimay. Pfister (CONC); Lonquimay.

Montero 5222, 5223 (MONTERO); Cerro

Nielol. Montero 4512 (MONTERO); Vol-

cán Llaima. Refugio Cautín. (MONTE-

RO); Refugio Volcán Llaima Ricard: ee

Matthei 5297/101 (CONC); Volcán Llai-

ma. Tres Pinos. Monteto 4245, 4246, 4247

(MONTERO); Cordillera Añihueraqui.

Montero 7465, 7468 (MONTERO).

Distribución geográfica:

En Chile su distribución abarca de la VIII

a X Región. Crece en la precordillera an-

dina entre los 700 a 2000 m.s.m. funda-

mentalmente en los claros que dejan los

árboles del bosque de Nothofagus y Arau-

cara.

Tanto Parodi (1953: 219) como Nicora

(1978: 113) afirman que en Argentina es

una especie dominante en la zona andina

de Neuquén y Río Negro.

FESTUCA MONTICOLA Phil., Anales Uni-

versidad de Chile 48: 576. 1873 — Festuca

28.

gracillima J].D. Hook. var. monticola (Phil.)

St.-Y ves, Candollea 3: 178. 1927. Typus:

Mi hijo halló esta Festuca en la cordillera

Pelada de la prov. Valdivia (SGO, vidi.

Fotogr. CONC).

Iconografía: Parodi: Fig. 8 A; A'; Nicora

1978: Fig. 71. En el texto: Fig. 6: C; 24: D.

Cespitosa, innovaciones intravaginales.

Cañas floríferas erectas, 60-100 cm de al-

to, 1-2 nodes, glabros. Vainas glabras,

abiertas. Lígula lobulada, glabra, 0,5-1

mm de largo. Láminas junceas lisas, 0,7-

1,1 mm de ancho, 10-20 cm de largo. Pa-

noja laxa, 5-11 cm de largo con 10-25 espi-

guillas, éstas de 12 a 15 mm de largo, 3-6

floras. Glumas mayores que la mitad del

antecio, la inferior de 5-6 mm de largo, la

superior 3-nervada de 6-7 mm de largo.

Raquilla de 1-1,5 mm de largo, escabrosa.

Lemma escabrosa en el dorso, 6-7,5 mm

de largo, mútica o aristada, arista de 1-2

mm de largo. Palea tan larga como la lem-

ma. Lodículas de 1-1,2 mm. Anteras de

3-3,2 mm. Cariopse de 4 mm de largo.

Material estudiado:

IX Región: Parque Nacional de Nahuelbu-

ta. 1460 m.s.m. Ricard: 5394 (CONC).

X Región: Cordillera Pelada. Cerro Mira-

dor. 1250 m.s.m. Ricardi, Marticorena 8e

Matthei 1191, 1201 (CONC).

Distribución geográfica:

Habita en lugares húmedos de la alta cor-

dillera de Nahuelbuta y cordillera Pelada.

FESTUCA THERMARUM Phil., Anales

Unwersidad de Chale. 21: 385. 1862. Typus:

La encontré en los manantiales de las Ter-

mas de Chillán (SGO, vidi).

Festuca commersonú Franch., Miss. Sc. Cap.

Horn. Bot. 5: 388. 1889 non Festuca com-

mersonú Spreng., Syst. Veg. 1: 353. 1825

— Festuca subantarctica Parodi, Revista Ar-

gent. Agron. 20, 4: 225. 1953. Typus: De-

troit du Magellans. (F, vidi. Fotogr.

CONC).

Festuca subandina Phil., Anales Universidad

de Chile 94: 177. 1896. Typus: Pariter in

Andibus Valdiviae ab Otto Phalippi lecta, et

quidem dicto Boquete de Trancacura

(SGO, vidi. Isotypus: B. Fotogr. CONC).

Festuca commersonú Franch. var. vipara

Makloskie inn Scott. Rep. Princeton

Univ. Exp. 8: 234. 1904. Nom. nud.

Festuca neuquensis St.-Yves var. parodiana

St.-Y ves, Candollea 3: 298. 1927. Typus:

Rep. Argentina. Neuquén. Pino Hacha-

do, vallées á 1400 m. Leg. Parodi 3195.

5.2.1920 (BAA, non vidi).

Iconografía: Franchet 1889: Tab. 8, Fig.

C; Saint-Yves 1927. Fig. 19, 20, 70; Parodi

1953: Fig. 7B.B”; 8B.B”; Nicora 1978; Fig.

67, Fl. En el téxto: Pip. 0: Es Fig. 24:

E, Eds.

Densamente cespitosa, innovaciones in-

travaginales. Cañas floríferas erguidas, 1-

2 nodes, 25-50 cm de largo. Vainas gla-

bras. Lígula 0,5-0,7 mm de largo, bilobu-

lada, glabra o finamente ciliada en el ápi-

ce. Láminas subjunceas, lisas brillantes,

18-25 cm de largo. Panoja laxa o espicifor-

me con 10-25 espiguillas, éstas de 12-14

cm de largo, 3-6 floras. Glumas más largas

que la mitad del antecio, la inferior de

4,5-6 mm de largo, 1-nervada, la superior

3-nervada, de 6,5-7 mm de largo. Lemma

7-8 mm de largo, escabrosa, mútica O aris-

tada, ésta de 1-3 mm de largo. Palea tan

larga como la lemma. Raquilla 1,2-2 mm

de largo, escabrosa. Lodículas de 1 mm de

largo. Estambres con anteras de 3-4 mm

de largo. Cariopse 3 mm de largo.

Material estudiado:

VII Región: Termas de Chillán. 2000

m.s.m. Pfister (CONC).

IX Región: Curacautín. Termas Río Blan-

co. 1200 m.s.m. Montero 2070 (MONTE-

RO); Volcán Llaima. Refugio Cautín.

Montero 4486 (MONTERO); Refugio Vol-

cán Llaima. Ricardi € Matthei 5304/108

(CONC); Volcán Llaima. Tres Pinos.

Montero 4442 (MONTERO).

X Región: Riñihue. Volcán Choshuenco.

Montero 5012 (MONTERO); Choshuen-

co. 1400 m.s.m. Schlegel 7224 (CONC);

Choshueco 1300 m.s.m. Schlegel 7352,

7355 (CONC); Antillanca. Ladera S.SO.

antes de llegar cráter Cerro Colorado

1270.m.s.m. Schlegel 7310 (CONC). Llan-

quihue Cerro Vichadero. Casa Pangue.

13800 m.s.m. Pfister (CONC).

XI Región: Chile Chico. Río Romero. 640

m.s.m. Sekr 495 (CONC).

XII Región: Río Santa María a 60 Km ca-

mino sur. En terrenos inclinados secos en

turbal. Pisano 3498 (CONC); Fiordo Silva

Palma. Angostura Titus. Costa opuesta a

ex aserradero. Forma champas sueltas so-

bre cojines de Sphagnum magellanmicum.

Abundante. Pisano 3765 (CONC); Baile

Orange, plage. Mission du Cap Horn.

1882-1883. Hyades (P); Baie Orange 15 m.

alt. plaine. Mission du Cap Horn 1882-

1883. Hyades 885 (P); Churruca. Expedi-

ción de la Magicienne 1876-1879. Savatier

1930 (P); Bahía Transición. Isla Capitán

Aracena. En vegas altas, suelos turbosos

con algo de drenaje. Pisano 3323 (CONC);

Lapatahia. Hahn (P).

Distribución geográfica:

Epecie de amplia distribución en nuestro

país. En su límite norte, es decir en las

regiones VII a X crece por sobre los 1200

m.s.m. y en lugares relativamente secos.

En su límite austral regiones XI y XII se le

encuentra en cerros de poca altura y por

lo general en lugares de gran humedad,

en especial sobre turberas.

En Argentina conforme a Nicora

(1978: 112) vive en los faldeos andinos de

Neuquén.

Observación Il.

Especie a menudo con espiguillas cloránt-

cas, especialmente en los ejemplares de

procedencia austral.

Observación Il.

Especie muy afín a F. scabriuscula de la cual

se diferencia por las hojas lisas, sin aguijo-

nes en su cara abaxial.

0,] mm

P— A

i e9 AN

IC a

” .

O to O

A. 7

A O

Y a

— Ñ ,

Fig. 24. F. morenensis: A. Transección de la lámina (Ricardi, Marticorena £ Matthei 1407; F. scabriuscula: B. Transección de

la lámina (Montero 2728); C. Lígula (Pfister); F. monticola: D. Transección de la lámina (Ricardi, Marticorena $e Matthei

1191); F. thermarum: E. Planta (Typus); F. Espiguilla (Typus F. commersona);-G. Transección de la lámina (Typus).

ESPECIES EXCLUIDAS

Festuca alopecurus (Gaud.) Brongn. = Poa alopecurus (Gaud.) Kunth

. antarctica (Dum. d'Urv) Kunth = Poa alopecurus (Gaud.) Kunth

. antarctica Spreng. = Poa flabellata (Lam.) Raspail

. antucensis (Trin.) Steud. = Vulpia antucensis Trin.

DDD AAA

. arenaría Lam. p.p.

. Arenaria Lam. p.p.

. arundo J.D. Hook.

biflora Steud.

. brizoides (Lam.) Spreng.

. caespitosa (Forst.) Roem £ Schult.

. cepacea Phil.

commersonú Spreng.

. commutata Steud.

. cooku J.D. Hook.

. elliota Hack.

. erecta Kunth

. enolepis E. Desv.

. flabellata Lam.

. fuegiana J.D. Hook.

. muralis Kunth

. patagonica Phil.

. pogonantha Franch.

. pusilla Bank 8: Soland.

. sciuroides Roth

. Spanantha Phil.

Poa robusta Steud.

Poa alopecurus (Gaud.), Kunth

Poa alopecurus (Gaud.) Kunth

Puccinellia biflora (Steud.) Parodi.

Chascolytrum erectum (Lam.) Desv.

Poa flabellata (Lam.) Raspail

Bromelica cepacea (Phil.) Nicora

Chascolytrum subaristatum (Lam.) Desv.

Vulpia megalura (Nutt.) Rydberg

Poa cooku (J.D. Hook.) J.D. Hook.

Poa holciformis Presl

Chascolytrum erectum (Lam.) Desv.

Vulpia envolepis (E. Desv.) Blom

Poa flabellata (Lam.) Raspail

Poa fuegiana (J.D. Hook.) Hack.

Vulpia myurus (L.) Gmelin

Poa sp.

Poa pogonantha (Franch.) Parodi

Nom. nud.

Vulpia dertonensis (Al) Gola

Poa sp.

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INDICE DE NOMBRES LATINOS

Araucaria araucana (Mol.) K. Koch, 56

Bomarea involucrosa (Herb.) Baker, 46

Bromelica (Thurber) Farwell, 22

. cepacea (Phil.) Nicora, 60

ardionema ramossisimum (Wein.) Nels «

Macbr., 46

hascolytrum erectum (Lam.) Desv., 60

h. subaristatum (Lam.) Desv., 60

iplostephium meyenii Wedd., 46

unalia spinosa (Meyer) Dammer, 46

Festuca L., 22

] mm»

mmm”

555

fl e de e ls e A e o

. acanthophylla E. Desv., 6, 12, 13, 14, 15, 19,

ME EL, 52, 55

acuta Phil., 6, 52

alopecurus (Gaud.) Brongn., 60

altissima All., 49

antarctica (Dum. d'Urv.) Kunth, 6, 60

antarctica Spreng., 60

antucensis (Trin.) Steud., 6, 60

arenaria Lam., 6, 60

argentina (Speg.) Parodi, 7, 14, 15, 20, 49, 50

arundinacea Schreb., 7, 12, 14, 15, 18, 46, 49,

arundo J.D. Hook., 6, 60

asperata Phil., 6, 51

barrazii Muñoz, 7, 51

berteroniana Steud., 6, 51, 53

biflora Steud., 6, 60

brizoides (Lam.) Spreng., 60

cabrerae Parodi, 41

caespitosa (Forst.) Roem. £ Schult., 60

cavillieri St Yves., 7, 49

. cepacea Phil., 6, 60

. Chrysophylla Phil., 6, 7, 9, 12, 14, 15, 18, 38,

.Cirrosa (Speg.) Parodi, 7, 13, 14, 15, 19,50, 53

coirón Steud., 6, 51

commersonii Franch., 57, 59

commersonii Franch. var. vivipara Makloskie,

commersonii Spreng, 7, 57, 60

commutata Steud, 6, 60

. Ccontracta Kirk, 7, 13, 14, 15, 17, 41, 44

. cookii J.D. Hook, 60

davilae Phil., 6, 26

. deserticola Phil., 7, 9, 12, 14, 15, 18, 43, 44

. deserticola var. chrysophylla (Phil.) St. Yves,

deserticola var. hypsophila (Phil.) St. Yves, 46

deserticola var. juncea (Phil.) St. Yves, 38

71... .u2nm2»>

2 mmm

LA A a

.. deserticola var. paupera (Phil.) St. Yves, 43

". desvauxii Phil., 6, 52, 54

. desvauxii var. ampla St. Yves, 52

. dumetorum L., 26

. dumetorum Phil., 26

". duriuscula L. sensu J.D. Hook., 33

“. elatior L., 46

. elatior var. arundinacea (Schreb.) Wimmer.,

. elatior ssp. arundinacea Hack., 46

. elliotii Hack., 7, 60

erecta Dum. d'Urv., 7, 41, 60

erecta var. cirrosa Speg., 50

. erecta (Huds.) Wallroth, 41

erecta Kunth, 60

. eriolepsis E. Desv., 6, 60

. Flabellata Lam., 60

. fuegiana J.D. Hook, 6, 60

. glaucophylla Phil., 6

gracillima J.D. Hook., 6,7, 13, 14, 15, 16, 22,

30, 34

gracillima var. monticola (Phil.) St. Yves, 57

gracillima var. monticola sub var. pallescens

St.-Y ves, 45

hypsophila Phil., 6, 7, 9, 12, 15, 20, 46, 48

insularis Steud., 6, 24

juncea Phil., 6, 7, 38

juncifolia St. Amans, 8, 14, 15, 17, 27, 29

kurtziana St. Yves, 7, 12, 13, 14, 15, 17,22,41,

laxiflora Phil., 6, 24

lechleriana Steud., 6, 24

longidiurna Parodi, 7, 50

magellanica Lam., 5, 6,7, 12, 13, 14, 15, 33,

31, SÓ

magensiana Potztal, 7, 14, 15, 16, 32, 34, 36

. monticola Phil., 6, 7, 13, 14, 15, 19, 56, 59

. morenensis Matthei, 8, 11, 12, 14, 15, 19, 54,

muralis Kunth, 60

. nardifolia Griseb., 7, 9, 12, 14, 15, 18, 38, 39

. neuquensis St. Yves var. aspera St. Yves, 7, 56

neuquensis var..parodiana St. Yves, 57

. oligantha Phil. ex St. Yves, 43

. orthophylla Pilger, 7, 9, 12, 14, 15, 18,28, 31,

. ma L., 7, 14.23.35

. Ovina ssp. eu-ovina, 35

ovina ssp. eu-ovina var. vulgaris (Koch) Hack.,

mom

o a a

A A

ovina ssp. hystricola Hack., 33. 35

ovina ssp. hystricola subvar. pubispicula St.

Yves: 27

. ovina ssp. magellanica (Lam.) St. Ives var.

lamarckiana St. Yves, 25

ovina var. antarctica Hack., 33

ovina var. magellanica (Lam.) Hack., 33

ovina ssp. magellanica var. lamarckiana St.

Y ves subvar. eulamarckiana St. Yves, 33, 35

ovina var. pyrogea (Speg.) Hack., 27

. pallescens (St. Yves) Parodi, 7, 14, 15, 17, 45,

panda Swallen, 7, 12, 14, 15, 17, 35, 37

pascua Phil., 6, 56

patagonica Phil., 6, 60

paupera Phil., 6, 7, 43

philippii Becher, 26

platyphylla Steud., 6, 7, 24

pogonantha Franch, 7, 60

. pratensis Huds., 49

. purpurascens Banks $ Solander ex J.D. Hook. ,

077,13), 14, 15, 20 24025

purpurascens var. aristata E. Desv., 24, 26

. purpurascens var. genuina St. Yves, 24

. purpurascens var. genuina forma aristata St.

Yves, 24, 26

. purpurascens var. genuina forma scabriuscula

St. Yves, 26

purpurascens var. platyphylla (Steud.) St.

Yves, 24

. purpurascens var. submutica E. Desv., 24, 26

. pusilla Banks 8: Soland. ex J.D. Hook., 60

pyrogea Speg.., 7, 14,15:27,29

. robusta Phil., 6, 7, 51

robusta var. scabriuscula (Phil.) St. Yves, 56

nubra E..8, 44,415, 16, 27, 29

. rubra var. genuina sub var. juncea Hack., 27

5-5 > > De 06 Ue De > > > e

. scabriuscula Phil., 6, 7, 12, 13, 14, 15, 19,41,

36, 30, 39

. Ssciuroides Roth, 60

. serranoi Phil., 6

spaniantha Phil., 6, 60

. Steudelii Phil., 6, 56

subandina Phil., 6, 57

subantarctica Parodi, 7, 57

. tectoria St. Yves, 7, 11, 12, 14,,15,20445:047

. tenuifolia Sibth., 8, 14, 15, 17, 33, 34

.thermarumPhil.,6,7, 12, 13, 14, 15,19,57, 59

. trachylepis Hack., 7, 26

. tunicata,E. Desv..:6, 7,12: 141951 AOS

. tunicata forma scabra St. Yves, 51

. werdermannii St. Yves, 7, 11, 12, 14, 15, 16,

30,31

Laurelia sempervirens (R. 81 P.) Tul., 13

Nothofagus Blume, 12, 56

N. obliqua (Mirb.) Oerst., 12, 13

N. pumilio (P. £ E.) Krasser, 12

PoaWl.::22

Poa alopecurus (Gaud.) Kunth, 60

P. argentina Speg., 49

P. cookii (J.D. Hook.) J.D. Hook., 60

P. flabellata (Lam.) Raspail, 6, 60

P. fuegiana (J.D. Hook.) Hack., 60

| Polylepis tomentela Wedd., 46

holciformis Presl, 60

pogonantha (Franch.) Parodi, 60

robusta Steud., 60

Puccinellia Parl., 22

BP.

biflora (Steud.) Parodi, 60

Vulpia C.C. Gmel., 22

<XZ<<<

. antucensis Trin., 60

. dertonensis (All.) Gola, 60

. eriolepis (E. Desv.) Blom, 60

. megalura (Nutt.) Rydberg, 60

. myurus (L.) Gmelim, 60

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE.

EDITORIAL UNIVERSITARIA S.A.,

EN EL MES DE JUNIO DE 1982

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

GAYANA tiene por objeto dar a conocer las investigaciones

originales del personal científico de la Facultad de Ciencias Biológ1-

cas y de Recursos Naturales de la Universidad de Concepción.

Esta publicación consta de una Serie Botánica, una Zoológica

y una Miscelánea, incluyéndose dentro de cada Serie trabajos bioló-

gicos en su sentido más amplio.

Cada número se limitará a un solo trabajo.

GAYANA no tiene una secuencia periódica, sino que los

números se publican tan pronto como la Comisión Editora recibe las

comunicaciones y su numeración es continuada dentro de cada

serie.

GAYANA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia. Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

CASILLA 2407 APARTADO 10

CONCEPCION, CHILE

EDITORIAL UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

,, ISSN 0016-5301

$ GAYANA

BOTANICA 1982 N? 38

COMUNIDADES DE ALGAS EPIFITAS EN

MACROCYSTIS PYRIFERA DE ISLA

NAVARINO, CHILE

Marcela Avila, Krisler Alveal y Héctor Romo

RU EN

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

PEAGUETAD DE. CDENCIAS BEIEOLOGCIECAS. Y. DB

RECURSOS”. NATURALES

UNTVERSTDIAD DE. CONGCGEPCTLON

SEL ETE

EDITOR

Enrique Bay-Schmith B.

COMITE CONSULTOR

Miren Alberdi Raúl Fernández

Universidad Austral, Valdivia Universidad de Chile, Santiago

Sergio Avaria Luis Ramorino

Depto. de Oceanología, Montemar Depto. de. Oceanología, Montemar

Nibaldo Bahamonde Jorge Redón

Museo Nacional de Historia Universidad de Chile, Valparaíso

Natural, Santiago

Bernabé Santelices

Danko Brncic Universidad Católica, Santiago

Universidad de Chile, Santiago

Federico Schlegel

Eduardo Bustos Universidad Austral, Valdivia

Universidad de Chile, Santiago

José Stuardo

Hugo Campos Universidad de Concepción, Concepción

Universidad Austral, Valdivia

Haroldo Toro

. Juan C. Castilla Universidad Católica, Valparaíso

Universidad Católica, Santiago

Eduardo del Solar

Universidad Austral, Valdivia

ISSN 0016-5301

GAYANA

BOTANICA 1982 N* 38

COMUNIDADES DE ALGAS EPIFITAS EN

MACROCYSTIS PYRIFERA DE ISLA

NAVARINO, CHILE

Marcela Avila, Krisler Alveal y Héctor Romo

UNIVERSIDAD DE CONCE PET

CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chale, I : 14 (1848).

Impreso en

EDITORIAL UNIVERSITARIA

San Francisco 454-Casilla 10220

Santiago-Chile

COMUNIDADES DE ALGAS EPIFITAS EN

Macrocystis Pyrifera DE ISLA NAVARINO, CHILE

Marcela Avila, Krisler Alveal y Héctor Romo

Financiado por la Armada de Chile

RESUMEN

Se efectuó un estudio de la flora epífita de Macrocystis

pynifera (L.) Ag. del Canal Beagle en la localidad de Puerto

Toro, Chile (55%05'S; 67%05'"W). Las principales especies

encontradas en cuatro muestreos realizados desde sep-

tiembre de 1979 a julio de 1980 fueron: Ulvella sp. Ecto-

carpus sp., E. chantransioides, Erythrotrichia carnea, Acrochae-

tium fuegiense, Picconiella pectinata, Ceramium rubrum, C.

stnictum, C. diaphanum, Ceramium sp., Heterosiphomia berke-

leyi, Antithamnion simile, Antithamion sp., Antihamnionella

sarniense, Mederothamnion flaccidum, Polysiphomia abscissa y

Polysiphonia sp.

Los grupos Phaeophyta y Rhodophyta se presentaron

fértiles durante todo el año. En algas rojas se observó

predominancia de estados tetrasporangiales y vegetativos

en invierno.

El análisis de similitud entre diferentes estaciones mos-

tró valores bajos, con cambios nítidos de la composición

específica de la flora epífita. La colonización ocurre prin-

cipalmente en los estipes y láminas viejas de las plantas de

M. pynfera.

ABSTRACT

A study of epiphytic flora of Macrocystis pyrifera L. (Ag.)

from Beagle Channel was carried out at Puerto Toro,

Chile (55%05'S; 67%05'"W). The main species found in four

surveys from September 1979 to July 1980 were: Ulvella

sp., Ectocarpus sp., E. chantransioides, Erythrotrichía carnea,

Acrochaetium fuegiense, Picconiella pectinata, Ceramium ru-

brum, C. strictum, C. diaphanum, Ceramium sp., Heterosipho-

nia berkeleyi, Antithamnion simile, Antithamnion sp., Antitham-

nionella sarniense, Medeiothamnion flaccidum, Polysiphonia

abscissa and Polysiphonia sp.

The Phaeophyta and Rhodophyta groups were in fer-

tile stage during all the year. In red algae, predominance

of tetrasporangial and vegetative stages in winter were

observed. Similarity analysis between different seasons

showed low values owing to nitid changes in the specific

composition of epiphytic flora.

The colonization occurs mainly on stipes and old bla-

des of M. pynifera plants.

INTRODUCCION

Las especies del género Macrocystis conforman

verdaderos “bosques marinos” con existencia

de biomasa abundante en un espacio restrin-

gido, al mismo tiempo que genera característi-

cas ambientales especiales para poblaciones

secundarias. La primera característica implica

disponibilidad de materia orgánica para el

hombre y animales marinos, y la segunda, un

ambiente de vida a organismos de la fauna y

flora que buscan en él sustrato, refugio, ali-

mentación o ambientes apropiados de pos-

turas.

M. pyrifera, por su morfología, distribución

espacial y temporal, permite la existencia aso-

ciada a él de algas epífitas distribuidas desde

su Órgano de fijación hasta las frondas ubica-

das en la superficie del agua.

Varios autores han estudiado la flora aso-

ciada a las grandes algas pardas, entre ellos:

Tokida (1960) quien se refiere a epífitas en

algas Laminariales de los géneros Chorda, Aga-

rum, Alaria, Laminaria, Lessontopsis, Macrocystas,

Nereocystis y otras. En Macrocystis encuentra

epífitas de los siguientes géneros: Myrionema

(Feofita), y Porphyra, Botryocladia y Antitham-

nion (Rodofita). North (1971), Neushul

(1971), Devinny y Kirkwood (1974) en los

“kelps” de la costa de la Península de Monte-

rrey observaron que la composición de espe-

cies en relación a la profundidad varía noto-

riamente. Dawson, Neushul y Wildman

(1960) cita Devinny y Kirkwood (1974), se re-

fieren a especies epífitas de Macrocystis en la

costa sur de California y Markham (1969) es-

tudia durante un año la distribución vertical y

temporal de especies de algas que viven sobre

Nereocystis luetkeana. Estas macroalgas, según

Markham (op. cit.), constituyen un sustrato

ideal para estudios de distribución vertical en

áreas relativamente restringidas.

Estudios ecológicos en Macrocystis de Cali-

fornia han sido realizados por Rosenthal el al.

(1974) quienes analizan asociaciones algales,

faunísticas y procesos de germinación, reclu-

tamiento y sobrevivencia de las plantas, y Sut-

ton (1971) entrega abundante información

ecológica como resultado de estudios efectua-

dos durante cinco semanas en áreas de Macro-

cystis de Monterrey.

Este estudio pretende conocer los compo-

nentes algológicos que viven sobre M. pyrifera

de Puerto Toro, Isla Navarino, determinar su

distribución vertical y variaciones en un lapso

de 11 meses.

MATERIALES, METODOS Y AREA

INVESTIGADA

Las plantas de Macrocystis pyrifera se colectaron

mediante SCUBA en las áreas ubicadas al NW

y SW de Puerto Toro (55%05'S; 67%05'W) (Fig.

1), localidad ubicada en el Canal Beagle, Chi-

le, XII Región. Las colectas se efectuaron en

septiembre y diciembre de 1979 y en abril y

julio de 1980.

Con el objeto de conocer los niveles epifita-

dos y la distribución vertical de las especies en

las plantas de M. pynifera, las plantas colectadas

se fraccionaron en trozos de 1 m a partir de los

discos de fijación, individualizándose además

sectores superior, medio e inferior de las plan-

tas. Cada sector de 1 m de longitud fue deno-

minado M; - M> - Ma etc., a partir del disco de

fijación del alga.

Cada trozo de estipe se estudió en secciones

de 20 cm., las epífitas se separaron para estu-

dios histológicos utilizando lupa estereoscópi-

ca. Cada sector de estipe se examinó cuidado-

samente y las epífitas fueron removidas en su

totalidad a fin de completar posteriormente

los estudios de identificación de las especies.

Las preparaciones utilizadas para dicha iden-

tificación al microscopio se hicieron con Karo

Syrup al 60%, confeccionándose dibujos con

cámara clara de cada una de las algas encon-

tradas.

El área investigada (Fig. 1) se encuentra en

la parte oriental de Isla Navarino en la locali-

dad denominada Puerto Toro. La parte coste-

ra del área se encuentra rodeada de una franja

de Macrocystas pyrifera que varía entre 30 y 45 m

de ancho. Las plantas crecen en sustratos du-

ros, preferentemente bloques y macizos roco-

sos hasta profundidades de 18 m. El área estu-

diada se encuentra en lugares protegidos del

oleaje. Visibilidad desde la superficie en meses

de agosto-septiembre es de aproximadamente

15-17 m. La visibilidad en meses de primavera

(diciembre) baja a 5-6 m.

RESULTADOS

Las especies de algas que encuentran sustrato

en estipes y frondas de M. pyrifera pueden

agruparse fundamentalmente en 3 de las 4

divisiones más importantes de macroalgas,

siendo el grupo Rhodophyta el más represen-

tativo en esta comunidad.

En agosto y septiembre (1979) solamente

la Chlorophyta Ulvella sp. se distribuye casi en

toda la longitud de estipes de 7 m de largo, en

la parte media se agrega Enteromorpha sp. y en

niveles altos Ulotrix flacca. De las Phaeophyta,

solamente cabe destacar la ubicación que pre-

sentan Myrionema y Ectocarpus, hacia niveles

altos.

El grupo de las algas rojas y en especial

Ceramiales es el que tiene una mayor repre-

sentación y una distribución más amplia.

El aspecto general (Tabla 1) señala una co-

lonización del estipe en casi toda su longitud

centrándose en los sectores My a Má. La por-

ción más apical (M,) solamente estaba coloni-

zada por algas de los géneros Myriogramme,

Acrochaetium y Erythrotricha.

Destacable es la colonización de M; por casi

la totalidad de las Rhodophyta presentes en

esa época.

FRANJA

MACROCYSTIS

PUERTO

TORO

ES drea estudiada

escala aprox. 1: 5.000

Fig. 1. Area investigada. Se encuentra en la parte oriental de Isla Navarino, en la localidad denominada

Puerto Toro. La parte costera del área se encuentra rodeada de una franja de Macrocystis pyrifera.

TABLA 1

DISTRIBUCION VERTICAL DE ALGAS EPIFITAS EN MACROCYSTIS AGOSTO-SEPTIEMBRE 1979

Estipes (Secciones)

Géneros y Especies

Chlorophyta

Ulothrix flacca

Ulvella sp.

Enteromorpha bulbosa

Phaeophyta

Ectocarpaceae

Ectocarpus sp.

Streblonema sp.

Mpynonema sp.

Sphacelaria sp.

Rhodophyta

Erythrotrichia carnea

Acrochaetium fuegiense

Plocamum secundatum

Antithamnion sarniense

Antithamnion simile

Antithamnion sp.

Callithamnion sp.

Ballia callitricha

Piccontella pectinata

Ceramum diaphanum

Ceramium rubrum

Ceramium strictum

Ceramum sp.

Mynriogramme sp.

Heterosiphoma berkeleyi

Colacodasya inconspicua

Polysiphoma sp.

Medeiothamnion flaccidum

Dasyptilon harveyi

Los estudios efectuados en diciembre seña-

lan algunos cambios en relación a la observa-

ción de agosto-septiembre (Tabla 2). Se de-

tectó en esta oportunidad la presencia de Rhi-

zoclonium sp. y la ubicación preferencial del

grupo Chlorophyta en los niveles basales de

M. pynfera.

Las Phaeophyta, cuya distribución se res-

tringía a los niveles altos en septiembre, ahora

Parte Parte

Media Super.

se extiende hacia la parte media y basal de

estipes de 7 m. Se agregan especies de Ectocar-

pus, Myriotrichia, Sorocarpus y Gaffordia.

Las Rhodophyta Erythrotrichia carnea y Ácro-

chaetium fuegiense se presentan ocupando des-

de M, a M, y el resto, especialmente la parte

media y basal de la planta. Especies como

Porphyra woolhousiae, Platyclinia taylor, Pseu-

dophycodrys sp. Polysiphonia abscissa y Ceramum

TABLA 2

DISTRIBUCION VERTICAL DE ALGAS EPIFITAS EN MACROCYSTIS

DICIEMBRE DE 1979

Géneros y Especies

Chlorophyta

Ulothrix flacca

Rhizoclonúum sp.

Ulvella sp.

Enteromorpha sp.

Phaeophyta

Ectocarpus sp.

E. chantransioides

Sorocarpus sp.

Giffordia sp.

Mpynrionema sp.

Sphacelana sp.

Mpyriotrichia sp.

Pylaiella sp.

Rhodophyta

Enythrotrichia carnea

Acrochaeltum fuegiense

Porphyra woolhoustae

Antithamnion simile

Antithamnionella sarniense

Callithamnion sp.

Picconiella pectinata

Ceramium involutum

Delesseriaceae

Pseudophycodrys sf.

M»yriogramme sp.

Platyclinia taylora

Heterosiphonia berkeley:

Polysiphoma sp.

Medeiothamnion flaccidum

involutum se presentan también por primera

vez en esta fecha. Se contabilizó un total de 29

especies tanto en septiembre como en diciem-

bre de 1979.

En abril, el aspecto general del epifitismo

es más simple. Las especies son marcadamente

menores en número (12 especies) con sólo 2

Chlorophyta, 3 Phaeophyta y 7 Rhodophyta.

Al establecer su presencia en 2 niveles del alga

sustrato, superior e inferior, se confirmó que

sólo 3 especies de un total de 12 se encuentran

en los niveles altos, lo que indica capacidad de

las algas para colonizar niveles profundos. Las

especies remanentes, en general son de menor

tamaño que en la época anterior, lo que hace

difícil su identificación (Tabla 3).

El bajo número de constituyentes indica

una declinación de la riqueza específica, lo que

debería relacionarse con la disminución de la

cantidad de luz que llega a los diferentes nive-

les del “bosque” de Macrocystis.

A medida que los muestreos se aproximan

al invierno (julio), se observa que el número

de especies y grado de epifitismo disminuyen.

Solamente fueron encontradas especies de

Chlorophyta y Rhodophyta, las primeras con

una ubicación preferentemente basal y Rho-

dophyta con una distribución más amplia (Ta-

bla 4). Prácticamente la mitad de las especies

encontradas en la observación anterior se

mantienen a inicios de invierno.

En esta época las especies se mantienen co-

TABLA 3

DISTRIBUCION VERTICAL DE ALGAS EPIFITAS

EN MACROCYSTIS

ABRIL 1980

Nivel Nivel

inferior

superior

Erythrotrichia carnea

Acrochaetium fuegiense

Plocamum secundatum

Piccomiella pectinata

Ceramium strictum

Ceramum rubrum

Polysiphomia sp.

Tabla 4

DISTRIBUCION VERTICAL DE ALGAS EPIFITAS

EN MACROCYSTIS

JULIO 1980

Nivel Nivel

de llm de 12m

Chlorophyta

Ulvella sp.

Codiolum gregaríum

Rhodophyta

Enythrotrichia carnea

Acrochaetium fuegiense

Antithammionella sarniense

Antithamnion simile

Ballhia callitricha

Piccomella pectinata

Ceramum rubrum

Delesseriaceae

Heterosiphoma berkeleyi

Medetothammion flaccidum

Polysiphomia abscissa

FRFFA FE AF+4+++

lonizando sectores de plantas a 11 y 12 m de

profundidad. No se observó presencia de es-

pecies del grupo Phaeophyta. Ejemplares de

M. pynmfera colectados a las dos profundidades

señaladas muestran diferente colonización,

como aparece indicado en la Tabla 4.

Variaciones de la flora epífita en el tiempo.

Los registros de algas epífitas en M. pyrifera

indican la existencia de 4 grupos de algas indi-

vidualizados según su frecuencia relativa a lo

largo del tiempo (Tabla 5) y que son caracteri-

zadas con: presencia ocasional (0=1 vez), pre-

sencia regular (R=2), presencia constante

(C=3 ó 4 veces) y presencia en épocas alterna-

das (A=2 veces) en un total de 4 observaciones

espaciadas a lo largo de 11 meses.

En el grupo de algas verdes, la presencia de

las especies en el tiempo es más bien ocasional

(O) y regular (R), destacándose Ulvella sp. co-

mo constante (C=4). Igual sistema de distri-

bución en el tiempo presentan las Feofitas Ec-

tocarpus sp. y Sphacelaria sp. que quedan en la

categoría de constantes (C=3) y el resto en

presencia regular (R) y ocasional (O).

Las algas rojas son indudablemente los

componentes epífitos más constantes a lo lar-

go del tiempo, con 11 representantes (C=3 ó

4), 9 especies de presencia ocasional, una de

presencia alternada y solamente 3 de presen-

cia regular.

En el grupo de las Rhodophyta más cons-

tantes (C=4) cabe mencionar a especies de los

géneros Erythrotrichia, Acrochaettum Piccomella

y Ceramum. En C=3, algas de los géneros Hete-

rosiphonia, Antithamnionella, Medeiothamnion,

Polysiphonia y una Delesseriaceae no identifi-

cada.

El número total de especies de los 3 grupos

mayores (verdes, pardas y rojas) varía signifi-

cativamente en el tiempo, constatándose un

claro incremento en la riqueza específica de

septiembre a diciembre con una baja marcada

hacia los meses de abril y junio (Tabla 5).

Fenología reproductiva de las especies epífitas.

Si es difícil la identificación de especies de

regiones comúnmente no visitadas, más difícil

aún se torna la identificación de organismos

epífitos especialmente cuando las colectas son

espaciadas en el tiempo. Muchas especies

cumplen su ciclo en ambientes litorales o subli-

torales y otras tienen ciclos heteromórficos

FABLA 5

CARACTERISTICAS DISTRIBUCIONALES DE LAS ALGAS EPIFITAS DURANTE

EL PERIODO ESTUDIADO

Especies Sept. 79

Chlorophyta

Ulothrix flacca +

Ulvella sp. +

Enteromorpha sp. +

Rhizoclonium sp.

Codiolum gregarnmm

Cladophora sp.

Phaeophyta

E. chantransioides

Ectocarpus sp. ES

Ectocarpaceae +

Sorocarpus sp.

Giffordia sp.

Streblonema sp. .

Myrionema sp. +

Sphacelana sp. -

Mpynotricha sp.

Pylaiella sp.

Rhodophyta

Enythrotrichia carnea -

Acrochaettum fuegiense E

Porphyra woolhousiae

Antithamnion sp. +

Lejolisia sp. $

Antithammionella sarntense >=

Callithammon sp. E

Ballia callitricha +

Picconiella pectinata ==

Ceramum strictum +

Ceramum rubrum +

Ceramium involutum

Ceramium diaphanum E

Ceramium sp. +

Delesseriaceae +

Pseudophycodrys sp.

Myriogramme sp. 3

Heterosiphonia berkeley: E

Platyclinia taylorú

Colacodasya inconspicua +

Polysiphonia abscissa

Polysiphonia sp. $

Medeiothamnion flaccidum +

Dasyptilon harvey: >

Total de especies 29

aún no conocidos, de tal forma que contar con

las diferentes fases del ciclo vital, para asegu-

rar una correcta interpretación o identifica-

ción de especies, es a veces imposible.

Los resultados obtenidos señalan la existen-

Dic. 79 Abr. 80 Jul. 80

+ + +

+ +

+ E

+ + +

+ +

+ + +

+ +

30 12 13

cia de fase vegetativa de especies de Chlorop-

hyta a lo largo de todo el año (Tabla 6); sin

embargo, esta conclusión debemos indicarla

como tentativa ya que en este grupo es gene-

ralmente difícil la visualización e identifica-

TABLA 6

DISTRIBUCION DE FASES REPRODUCTIVAS DE ALGAS

EPIFITAS EN MACROCYSTIS

AGOSTO 79-JULIO 80

Especies Sept. 79 Dic. 79 Abril 80 Jul. 80

Chlorophyta

Ulothrix flacca V

Ulvella sp. V

Enteromorpha sp. iv

Rhioclonium sp.

Codiolum gregarium V

Cladophora sp. V

Phaeophyta

Ectocarpus sp. E

Ectocarpaceae E

E. chantransiordes

Sorocarpus sp.

Giffordia sp.

Streblonema sp. : V

Myrionema densum PU

Sphacelaria sp. V V V

Mpnotricha sp. pu

Pylaella sp. U

CUDIUAS

Rhodophyta

Erythrotrichía carnea m V m V m V mV

Acrochaetium fuegiense m TV m V V V

Porphyra woolhousiae

Plocamium secundatum

Antithamnion sp.

Antithamnion simile

Antithamnionella sarniense

Callithamnion sp.

Lejolisia sp.

Ballia callitricha

Piccontella pectinata V

Ceramium involutum TIN,

Ceramum rubrum V

Ceramium strictum

Ceramum diaphanum

Ceramium sp.

Pseudophycodrys sp.

Myriogramme sp.

Heterosiphoma berkeleyi

Platyclinia taylori

Colacodasya inconspicua

Polysiphoma abscissa Cv Y

Polysiphoma sp.

Medeiothamnion flaccidum

Dasyptilon harvey

ELA

E SS

”r]

V V

SES SS <

<S,

EV V ¡5 GUAY

<z<

V = vegetativa T = tetrasporangio

P = plurisporangio M = masculina

U = unisporangio F = femenina

m = monosporangio C = cistocárpica

ción de tipos de estructuras reproductivas, es-

tructuras que además tienen la característica

de ser efímeras, al producirse liberación masi-

va de esporas o gametos cuando las condicio-

nes ambientales de temperatura, iluminación

y estado del mar son favorables.

En el caso de algas pardas, el cuadro es

diametralmente opuesto, ya que la mayoría de

las especies encontradas presentaban órganos

de reproducción en todas las épocas mues-

treadas. En el mes de diciembre la proporción

entre el número de especies y plantas fértiles

era máxima. En el mes de julio, en cambio,

hubo ausencia de Feofitas.

Las especies de Rodofita presentan a lo lar-

go del tiempo variaciones marcadas referente

a proporciones de plantas estériles y fértiles.

Se contabilizó como período fértil la época en

que se encontró como mínimo una fase del

ciclo biológico fértil, aun coexistiendo con

plantas estériles o vegetativas.

Las conclusiones de este estudio indican de

modo general presencia de estados fértiles de

las algas en todas las épocas del año, aunque

en forma bastante acentuada en el período

correspondiente al mes de diciembre, con

plantas tetrasporofitas, carposporofitas y ga-

metofitas. En el período de invierno (julio) se

detectó predominancia de estados vegetativos

y tetrasporofitos.

DISCUSION

Variadas son las características que presentan

epífitas y huéspedes relacionadas fundamen-

talmente con alteraciones en los cloroplastos,

pigmentos y productos de asimilación (Ra-

wlence, 1972). Varias especies han sido defini-

das como organismos que mantienen un epifi-

tismo obligado (Hartog, 1971) derivados de su

constitución biológica (Lindauer y Chapman,

1961), aunque la mayoría sólo ocasionalmente

mantiene este sistema de vida (Collantes y Et-

cheverry, 1980).

En los estudios efectuados en M. pynifera de

Puerto Toro solamente se comprobó la pre-

sencia de especies sobre estipes y láminas del

alga sustrato, sin analizar en forma más dete-

nida el tipo de relación existente entre epífita

y huésped.

La mayoría de las especies encontradas, es-

pecialmente clorofitas, se ubican preferente-

mente en las láminas rugosas de M. pynfera

pertenecientes al dosel, relación ya observada

por Hartog (1971, fide Santelices, 1977), quien

señala la presencia regular de epífitas en estas

frondas.

Varios son los factores que refuerzan los

procesos epifitarios, entre otros, naturaleza

química de las algas, antibiosis, tamaño del

huésped, textura de alga sustrato, emisión de

hormonas e incluso capacidad heterotrófica

de los organismos (Provasoli, 1964). Es perti-

nente entonces pensar que este proceso es el

resultado de la acción sinérgica de factores

biológicos, físicos y químicos.

Muchas especies, entre ellas las del género

Macrocystis, están cubiertas por una película

mucilaginosa la cual, según Ballantine (1979)

impediría la implantación epifitaria. Nuestras

observaciones en Grateloupia lanceola de la re-

gión del Bío-Bío, Chile, nos indica que esta

especie a pesar de tener una superficie extre-

madamente suave y mucilaginosa, presenta

un alto grado de epifitismo por Ceramium ru-

brum.

Las observaciones efectuadas por Ballanti-

ne (op. cit.) referentes a epífitas en Dictyota

indican un proceso de colonización preferen-

cial en partes viejas del huésped, similar al

encontrado en Macrocystis en Puerto Toro, he-

cho explicable por el mayor tiempo de perma-

nencia y consecuentemente, disponible como

sustrato colonizable.

Sieburth y Canover (1965, fide Ballantine,

op. cit.) destacan la importancia que tienen las

sustancias antibióticas, producidas en regio-

nes merismáticas, en la zonación epifitaria en

Sargassum y en otros casos, las acciones micro-

bianas que destruyen la superficie de las fron-

das o eliminan la capa de mucílago (Ballantine

op. cit.) son agentes importantes en procesos

de epifitismo.

Observando la Tabla 7 se infiere que hubo

predominancia de estados vegetativos sobre

estados fértiles en todas las épocas excepto en

el mes de diciembre donde el número de es-

pecies con elementos reproductores fue clara-

TABLA 7

RESUMEN DE LOS ESTADOS REPRODUCTIVOS DE LAS ALGAS EPIFITAS EN M. PYRIFERA DE

PUERTO TORO EN LAS DIFERENTES EPOCAS DEL AÑO.

RECUENTOS EFECTUADOS

EPOCA DE OBSERVACIONES

Sep.

1979

1980 Total Anual

Abr. de Registros

ORGANOS DE REPRODUCCION:

Unisporangios

Plurisporangios

Monosporangios

Tetrasporangios

Masculinos

Femeninos

Carposporangios

N 09 =

N Q —

— Exclusivamente estados

vegetativos

— Proporción

Fértil VS Vegetativo

— Significado porcentual

— NY” total de observaciones

— N” total de especies

12/20

31201=62.b,

pon

—

[en]

O 0 HB JO gl

10 1

3/9

- 75.0

5/10

33.6 - 66.6

39/53

42.3 - 57.7

mente mayor. La situación anual de la fertili-

dad algal, sobre la base de cuatro épocas de

muestreo, muestra un balance entre estados

fértiles y estériles (42.5 y 57,7%, respectiva-

mente), considerando que no se efectuó mues-

treo en los meses de.enero y febrero, épocas,

donde se supone, existiría un máximo “flore-

cimiento” algal.

Aportan significativamente al cuadro de

fertilidad órganos de reproducción asexuada

como plurisporangios, monosporangios y te-

trasporangios con valores de 11, 6 y 7 veces,

respectivamente. Los estados menos frecuen-

tes fueron femeninos y carposporangios.

Los datos logrados permiten concluir que

los meses más favorables para los procesos

reproductivos son septiembre y diciembre

(primavera e inicios de verano), hay disminu-

ción en abril con inicios de incremento en el

mes de julio.

Un aspecto interesante dice relación con el

número de consumidores existentes en am-

bientes que aportan una buena heterogenel-

dad ambiental y que podrían ejercer una efec-

tiva presión de pastoreo, especialmente sobre

plantas nuevas o de pequeña talla como son las

especies epífitas. Este aspecto, al parecer, no

corresponde al área estudiada donde, deriva-

do de condiciones ambientales severas, no se

observa abundancia de consumidores prima-

rios en estratos medios y superiores del bos-

que de Macrocystis, aunque en los estratos basa-

les actúa una densa población de Loxechinus

albus.

El área estudiada está cíclicamente afectada

por épocas rigurosas relacionadas con intensi-

dad lumínica y horas de sol en los meses de

invierno, condiciones que podrían ser causan-

tes de un reforzamiento de la diversidad como

lo señalara Hutchinson (1961). Así, por ejem-

plo, en la época de invierno (abril y julio) se

encontraron epifitando Macrocystis 11 y 13 es-

pecies, respectivamente, mientras que en sep-

tiembre y diciembre (época de primavera e

inicios de verano) el número de especies fue

de 29 y 30 en estos meses, resultados concor-

dantes con los planteamientos de Hutchinson

(1951) referentes a estacionalidad y diver-

sidad.

Durante el período de estudio, fue posible

obtener información sobre flora epífita en M.

pyrifera de Puerto Toro, Chile, concluyendo

de manera general que las plantas no presen-

taban una alta frecuencia de epifitismo.

El proceso, sin embargo, se ve claramente

acentuado hacia diciembre (fines de primave-

ra) época donde hay mayor posibilidad de en-

contrar ejemplares con epífitas. En esta época

la colonización de frondas superficiales por

especies de Chlorophyta y Phaeophyta es no-

toria.

Los autores han efectuado también obser-

vaciones en “bosques” de M. pynfera de la re-

gión central de Chile, concluyendo que la si-

tuación no difiere mucho a lo observado en M.

pynfera de Puerto Toro, ya que el grado de

epifitismo en las plantas también es escaso o

ausente. Al parecer, la perduración de las

plantas en el tiempo, agitación de agua y pene-

tración lumínica hasta niveles profundos, se-

rían causales principales de este fenómeno,

características que son más favorables en las

regiones del sur de Chile.

Los resultados de distribución vertical de

algas sobre M. pynifera (Tabla 8) en el mes de

septiembre indican ubicación preferencial de

clorofitas y feofitas en los niveles medio y su-

perior, presentando una gama más amplia el

grupo de algas rojas. Al respecto, Markham

(1969), estudiando la distribución de epífitas

en N. luetkeana encuentra una distribución si-

milar, concluyendo que existiría correspon-

TABLA 8

DISTRIBUCION VERTICAL DE GRUPOS ALGOLOGICOS MAYORES Y ESPECIES DURANTE EL

PERIODO DE ESTUDIO.

Fecha de Grupos

Observación Taxonómicos

Chlorophyta*

Ulothrix

Phaeophyta*

Agosto - Sphacelaria

Septiembre Rhodophyta*

1979 Dasyptilon

Ceramium

Myriogramme

Colacodasya

Ulvella

Rhizoclonium

Enteromorpha

Phaeophyta*

Ectocarpus

Diciembre Myriotrichia

1979 Rhodophyta*

Polysiphonia

Erythrotrichia

Acrochaetium

Heterosiphonia

Antithamnionella

Callithamnion

Picconiella

Ceramium

Abril Chlorophyta*

1980 Phaeophyta*

Rhodophyta*

Julio Chlorophyta”

1980 Rhodophyta

Sector Sector Sector

Superior Medio Inferior

Estipe Estipe Estipe

*Distribución de la mayoría de las especies del grupo.

dencia entre la fórmula pigmentaria de las

especies presentes, con los niveles verticales

que colonizan.

Se ha indicado a menudo que existiría rela-

ción entre la estructura física y química de las

plantas y la flora epífita que sustenta. Expe-

riencias efectuadas con plantas artificiales en

bosques de Nereocystis (Markham, op. cit.) de-

muestran que tal hecho no sería efectivo, pri-

mando la posición espacial del sustrato para

permitir un cierto patrón de crecimiento epl-

fitario. Queda, sin embargo, por dilucidar la

constante relación que existe entre especies

epífitas y/o parásitas, con su planta sustrato,

ambas pertenecientes a grupos taxonómicos

afines.

En la gran mayoría de las plantas de M.

pynifera se observa ausencia de epífitas en las

porciones apicales, lo que indica que la veloci-

dad de colonización obedece a una estrategia

que debe iniciarse tempranamente en invier-

no para repuntar en primavera-verano. Se ob-

servó epifitismo solamente en frondas ya

adultas, gruesas y quebradizas; las frondas

nuevas más flexibles y de un color café claro se

presentaban en general limpias.

Los estudios de distribución vertical de epí-

fitas efectuados en Macrocystis concluyen que

una zonación más clara debería lograrse en

plantas artificiales, ya que la ausencia de elon-

gación daría estabilidad vertical a los diferen-

tes sectores y este“hecho relacionado con el

patrón de distribución lumínica entregaría

una relación causa-efecto más directa en el

espacio y tiempo.

De las especies de Chlorophyta y Phaeop-

hyta presentes, Ulvella, Ectocarpus y Sphacelaria

son constantes en el tiempo y en el grupo de

las Rhodophyta, especies de Erythrotrichia,

Acrochaetium, Piccomella y Ceramium. El grupo

de las Ceramiales es el más representativo en

el tiempo y capaz de colonizar todos los niveles

en los estipes de M. pyrifera.

El epifitismo temprano de Macrocystis jóve-

nes que crecen a 15 ó 17 m de profundidad,

implica capacidad de captar radiaciones sufi-

cientes y apropiadas. Este proceso se torna

claramente difícil bajo el tupido dosel del

“bosque” maduro, quedando entonces al jue-

go pigmentario de cada especie las posibilida-

des de colonización y sobrevivencia en los dife-

SEPTIEMBRE

DICIEMBRE

JULTO

ABRIL

0,8

0,6

0,4

072

CUOCIENTE DE SIMILITUD

0,0

Fig. 2. Similitud existente entre diferentes épocas del año

sobre la base de algas epífitas en M. pynfera.

rentes niveles. A medida que existe elonga-

ción de M. pyrifera las condiciones de ilumina-

ción se hacen más favorables.

Los valores de similitud entre diferentes

épocas de muestreo, en base a epífitas, son

bajos (Fig. 2). Los meses más similares son

septiembre y diciembre, que presentan un

elevado número de especies y coinciden con

períodos de buena iluminación. El mes de ju-

lio 1980 muestra baja similitud con los meses

anteriores y es más baja entre abril y los meses

precedentes.

Este análisis indica que la flora epífita expe-

rimenta rápidos cambios en la constitución

específica debido a que la implantación y desa-

rrollo se efectúa en estipes que están próximos

a decaer por efecto de senescencia. Por otra

parte, hay que considerar que la estacionali-

dad de muchas especies puede explicar estos

valores bajos de similitud en las distintas épo-

cas, ya que solamente el 13,3% de ellas se

presentaron en las cuatro épocas de muestreo

y el 17,8% apareció en tres de los cuatro mues-

treos, es decir, alrededor del 30% de la flora

epífita encontrada podría estar presente du-

rante la mayor parte del año (Fig. 2).

Este aporte al conocimiento de las caracte-

rísticas biológicas del “bosque” de M. pynifera

existente en aguas chilenas (Canal Beagle) es

el paso inicial para entender la estructura y

comportamiento de la comunidad algal, as-

pecto este último, que necesita indudablemen-

te de una fase de experimentación detenida,

considerando complementariamente el regis-

tro de condiciones abióticas para inferir causa-

lidad de la respuesta biológica.

CONCLUSIONES

— Las observaciones de flora epífita permiten

concluir de modo general la existencia de

un bajo grado de epifitismo en plantas de

Macrocystis pyrifera del área de Puerto Toro

a lo largo del año, especialmente en meses

de invierno (julio).

— Los géneros más constantes a lo largo del

año son: Ulvella, Ectocarpus, Erythrotricha,

Acrochaettum, Picconiella, Ceramum, Hetero-

siphonia, Antithamnionella, Antithamnion, Me-

detothamnion y Polysiphoma.

— En Phaeophyta la mayoría de las algas están

fértiles durante todo el año, excepto en ju-

lio en que el grupo se registra ausente.

— Durante todo el período de estudio el gru-

po Rhodophyta se presentó fértil. En di-

ciembre se observó plantas tetrasporangia-

les, carposporangiales y gametofíticas. En

invierno (julio) hay predominancia de esta-

dos vegetativos y tetrasporofitos.

— En el análisis de similitud entre diferentes

épocas del año, en base a epífitas, indica

valores bajos, lo que traducido en términos

biológicos señala cambios rápidos en la

constitución específica.

— La implantación de algas se produce, prefe-

rentemente, en estipes y frondas de Macro-

cystis que se encuentran cercanas a su perío-

do de senectud. Posiblemente contribuye a

este hecho, tiempo de permanencia de las

frondas, estructura superficial y la dismi-

nución de la capacidad fisiológica general.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo es parte de un programa de estu-

dio de la biología y utilización de Macrocystis

pynifera en Chile Austral. El trabajo fue finan-

ciado a través de un convenio de investigación

entre Armada de Chile y la Pontificia Univer-

sidad Católica de Chile, y realizado por el La-

boratorio de Algas del Departamento de

Oceanología de la Universidad de Concep-

ción.

Nuestros agradecimientos a los Sres. Vicen-

te Erbs, Eduardo Villouta, Sra. Mónica Dono-

so, Sres. José Cid y Edgardo Muñoz, por su

valiosa colaboración en laboratorio y en te-

rreno.

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epiphytes on macrophyte hosts offshore from

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(3): 73-105.

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

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EN EL MES DE AGOSTO DE 1982

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GAYANA consta de una Serie Botánica, una Zoológica y una

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BOTANICA 1982 N” 39

ESTUDIOS DEL CICLO DE VIDA DE

MACROCYSTIS PYRIFERA DE ISLA

NAVARINO, CHILE

Krisler Alveal, Héctor Romo y Marcela Avila

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

FACULTAD DE CLENECLAS BIOLTOGICAS: Y

RECURSOS ¡NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CAHTAEE

EDITOR

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COMITE CONSULTOR

Miren Alberdi

Universidad Austral, Valdivia

Sergio Avaria

Depto. de Oceanología, Montemar

Nibaldo Bahamonde

Museo Nacional de Historia

Natural, Santiago

Danko Brncic

Universidad de Chile, Santiago

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Depto. de.Oceanología, Montemar

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sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY. Hast. de Chile, I : 14 (1848).

Impreso en

EDITORIAL UNIVERSITARIA

San Francisco 454-Casilla 10220

Santiago-Chile

ESTUDIOS DEL CICLO DE VIDA DE MACROCYSTIS PYRIFERA

DE ISLA NAVARINO, CHILE

Krisler Alveal, Héctor Romo y Marcela Avila

RESUMEN

El ciclo vital de Macrocystis pyrifera de Isla Navarino, Chile

(55%05' S; 67%05'W) fue estudiado mediante cultivos ini-

ciados con zoosporas en medio Erdschreiber. Las mejores

condiciones experimentales se lograron a 15%C, fotope-

ríodo 12: T2 e intensidad luminosa de 1500 lux.

Las zoosporas desarrollaron gametofitos en dos sema-

nas los cuales estuvieron fértiles a los 30 días. La fusión de

elementos sexuales generó primero un filamento unise-

riado (esporofito inicial) 5-7 células y posteriormente una

pequeña lámina ovalada de 130 um de longitud mediante

tabicaciones longitudinales del filamento.

ABSTRACT

The life history of Macrocystis pyrifera from Navarino ls-

land, Chile (55%05" S; 67%05' W) was studied through

cultures initiated with zoospores in Erdschreiber me-

dium. The best experimental conditions were obtained at

15C, 12:12h photoregime and an irradiance of 1500 lux.

Zoospores developed into gametophytes within two

weeks, these in turn became fertile within thirty days. The

fusion of sexual elements produced first a 5-7 celled uni- *

seriate filament (initial sporophyte) and later a small oval

blade 130 um in length through longitudinal clivage of

the filament.

INTRODUCCION

A lo largo de la costa chilena existen praderas

de Macrocystis constituidas por dos especies

alada CU fundamentalmente por la for-

ma y estructura del órgano de fijación. En la

parte central y norte de Chile se distribuye M.

integrifola, mientras que hacia el sur se ubica

M. pymfera, teniendo ambas especies un área

de superposición distribucional en la región

de Valparaíso (33%02' S; 71938" W).

En el Canal Beagle, Chile, M. pyrifera repre-

senta el recurso algológico más importante. Se

presenta en cordones continuos pegados a la

costa, de 30 a 45 m de ancho, perdurables en el

tiempo. Como todo organismo dominante, en

un contexto material y funcional, otorga am-

plias posibilidades de vida a niveles secunda-

rios, incluyendo la existencia asociada de pro-

ductores primarios variados (micro y macroal-

gas) y vertebrados marinos, no descartándose

la inclusión del hombre en algún nivel de la

trama de este ecosistema en un futuro cer-

cano.

El conocimiento de procesos reproductivos

de poblaciones recursos es una información

primordial para entender su comportamien-

to. Con respecto a Órganos y sistemas de re-

producción de estas plantas, Setchell y Gard-

ner (1903, fide Neushul, 1963) y Scagel (1948,

fide Neushul, op. cit.) mencionan la presencia

de áreas fértiles en frondas carentes de flota-

dores que nacen en la parte basal de los esti-

pes. Anderson y North (1967) estudian los

procesos de liberación de esporas en Macrocys-

tis y los mismos autores (1969) se refieren a los

requerimientos de luz de las diferentes fases

reproductivas. North (1971), pensando en

procesos de recolonización, experimenta pro-

cedimientos de cultivo y siembra de estados

embrionarios de Macrocystis, logrando rápida

madurez mediante condiciones especiales de

iluminación.

La generación y perduración de esporofilas

en profundidades hasta donde la luz es poco

intensa, proceso acentuado por la presencia

de “canopy”, ha llamado la atención de auto-

res como Clendenning y Sargent (1958) quie-

Proyecto “Biología de Macrocystis de Isla Navarino”. Patrocinado por la Armada de Chile.

nes concluyen que las posibilidades de vida

para las esporofilas estaría asegurada por pro-

cesos de traslocación a través de placas criba-

das existentes en el tejido medular de Macro-

cystis.

En general, la estrategia de supervivencia

de Macrocystis puede ser variada, especialmen-

te en los estados jóvenes, etapa que a menudo

es difícil de visualizar en el ambiente natural;

estos estados pueden ser observados cuando

presentan 1-3 cm. de altura, como lo indican

Rosenthal et al. (1974) al referirse a estudios

efectuados en Macrocystis de California.

Neushul y Haxo (1963, 1968) indican que

cigotos o estados sexuales latentes pueden

existir bajo las frondas, esperando condicio-

nes óptimas y que intensidades luminosas in-

termedias (1500 lux) son las más aconsejables

para lograr procesos de crecimiento en estas

plantas.

Con este trabajo se pretende conocer el ci-

clo biológico de M. pyrifera del Canal Beagle,

conocer experimentalmente su velocidad de

desarrollo y determinar las condiciones más

adecuadas de cultivo. Por otra parte, se com-

paran los resultados con estudios efectuados

anteriormente por los autores (Candia et al.,

1979) en cultivos iniciados a partir de zoospo-

ras de M. pyrifera del área de Concepción.

MATERIALES Y METODOS

Mediante SCUBA se colectó esporofilas férti-

les de Macrocystis pyrifera a diversas profundi-

dades en las proximidades del muelle y en el

sector NW de Puerto Toro (55%05'S;

67%05'"W) (Fig. 1). Las colectas de material fér-

til se realizaron en los meses de septiembre,

diciembre de 1979, abril y julio de 1980.

Este material se guardó con agua de mar en

bolsas de polietileno y se trasladó al laborato-

rio en caja de material aislante con abundante

hielo. Esporofilas se trasladaron también en

termos refrigerados.

En el laboratorio, las frondas se lavaron y

escobillaron cuidadosamente bajo agua co-

rriente para eliminar epífitas. La presencia de

zoosporangios se comprobó con observacio-

nes al microscopio.

Fragmentos de esporofilas fértiles se corta-

ron en pequeños trozos (2 mm) y se mantuvie-

ron en agua de mar filtrada y en oscuridad. Se

colocaron trozos de cubreobjetos como sustra-

to en el fondo de cápsulas petri para recibir las

zoosporas, las que una vez liberadas y adheri-

das a los cubreobjetos se las incubó en medio

Erdschreiber (Mc Lachlan, 1973) y bajo condi-

ciones de 15%C + 2*C, fotoperíodo de 12: 12 y

a una intensidad lumínica de 1500 lux.

El inicio de los experimentos definitivos fue

el 30 de abril de 1980, procediéndose a reno-

var el medio de cultivo cada 10 días.

RESULTADOS

El ciclo de vida de M. pyrifera incluye una

alternancia de generaciones entre un esporo-

fito macroscópico (Fig. 2A) y gametofitos mi-

croscópicos (Figs. 2D, E).

La observación histológica de esporofilas

maduras muestra zoosporangios agrupados

en soros con paráfisis rectangulares altas (Fig.

2B). Las esporas son piriformes, biflageladas,

con los flagelos insertos lateralmente (Fig.

2C). A los 5 días se movilizan activamente en el

medio de cultivo y no se observa un asenta-

miento inmediato de ellas. El tamaño de las

zoosporas es de 5 um de largo y 3 um de

ancho. A los 10 días de cultivo, el número de

zoosporas libres disminuye, observándose en

cambio esporas fijas en los trozos de cu-

breobjetos. No se detecta germinación.

A los 15 días de cultivo ya se ha iniciado la

formación de gametofitos, los que presentan

escaso número de células, con ramificaciones

incipientes (Fig. 3A).

A los 20 días de cultivo se detectan diferen-

cias claras entre gametofitos femeninos y mas-

culinos; los femeninos se encuentran bien de-

sarrollados, presentando pocas ramificacio-

nes, con un diámetro de filamentos mayor que

el de los masculinos (10 y 5 um respectivamen-

te). Los gametofitos masculinos presentan

abundantes ramificaciones, adoptando for-

mas radiales (Figs. 3C, 4A, B).

A los 30 días de iniciados los cultivos, los

gametofitos femeninos forman ovocélulas en

los extremos de las ramificaciones (Fig. 3B) y

una vez producida la fecundación se inicia la

formación del esporofito (Fig. 3D).

En el cigoto, de forma ovoide, la primera

división es transversal al sentido del eje princi-

pal y el tamaño que alcanza el esporofito de

dos células es de 40 um de largo por 30 um de

ancho.

Posteriormente y por sucesivas divisiones

transversales se generan filamentos de 5-7 cé-

lulas en los que se distingue una clara célula

apical (Figs. 5B, C).

Los esporofitos juveniles de mayor número

de células (15-16) tienen un tamaño aproxi-

mado de 55 um de largo por 40 um de ancho.

El paso a esporofito laminar incluye clivajes

longitudinales hasta la formación de una pe-

queña planta de forma redondeada u ovalada

(Fig. 6A) de un tamaño superior a los 130 um

de largo (Figs. 5A y 6B).

El esporofito constituido por una lámina

pequeña puede generar uno o más filamentos

de fijación y en este estado no es fácil identifi-

car su porción apical, ya que el crecimiento es

consecuencia de la actividad divisional de to-

das las células.

En este estado el desarrollo a esporofito

adulto es relativamente rápido si se tienen

buenas condiciones de cultivo, temperatura,

iluminación y especialmente agitación de agua

y un medio abundante y suficientemente pro-

visto de nutrientes. La alteración de cualquie-

ra de estas condiciones detiene el proceso y la

posibilidad de pérdida de plantas es inmi-

nente.

Con anterioridad a este trabajo, los autores

habían ya realizado el desarrollo experimental

de M. pyrifera proveniente de Concepción, y

Braud et al. (1974) logran el desarrollo de M.

Pymifera y trasplante posterior a las costas de

Francia.

En líneas generales se puede señalar que

hay concordancia con las conclusiones obteni-

das por Candia et al. (1979) en el desarrollo de

M. pynifera procedente de Concepción, Chile

(36"40'S; 73%02'W), aunque en estos últimos

los filamentos iniciales de los gametofitos son

más alargados y los esporofitos en sus prime-

ros estados tienden a ser acintados en contra-

posición a esporofitos de Canal Beagle de lá-

minas más circulares.

Es importante resaltar que los primeros ex-

perimentos efectuados a 15%C, 2000 lux de

intensidad lumínica y fotoperíodo de 16: 8

no dieron resultados positivos y el material se

necrosó en los primeros días.

Las condiciones más exitosas se lograron a

15%C (+ 2C), fotoperíodo de 12: 12 e intensi-

dad lumínica de 1500 lux. En este caso, dos

factores de experimentación fueron impor-

tantes en el éxito del cultivo: fotoperíodo con

menor tiempo de exposición diaria de las

plantas e intensidad lumínica más baja (1500

lux).

Estas últimas condiciones simularían, al pa-

recer, en mejor forma las condiciones ambien-

tales del Sur de Chile.

Los cultivos efectuados en laboratorio de-

mostraron que con baja intensidad luminosa

se obtienen gametofitos masculinos y femeni-

nos estériles, bajo la forma de estructuras esfé-

ricas constituidas por filamentos ramificados

de color café. Al aumentar la intensidad lumi-

nosa y nutrientes se logró la producción de

estructuras reproductivas en gametofitos de

pocas células (5-6), resultados concordantes

con los de North (1971) quien logró rápida

madurez sexual regulando la intensidad lumi-

nosa y con los de Kain (1964) referente a la

importancia de nutrientes y luz en la sobrevi-

vencia de esporas.

En el material de puerto Toro no se observó

un segundo clivaje transversal al primero des-

pués de la primera división celular en la for-

mación de esporofito, sino únicamente tabi-

ques perpendiculares al eje, llegando a formar

pequeñas unidades uniseriadas (Fig. 5B). En

cierta medida el sistéma es semejante al descri-

to por Papenfuss (1942) para Ecklonia maxima,

ya que posteriormente se logra un esporofito

incipiente (17 células) que permanece unido al

gametofito femenino (Fig. 2G).

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo es parte de un programa de estu-

dio de la biología y utilización de Macrocystas

pyrifera en Chile Austral. El trabajo fue finan-

ciado a través de un convenio de investigación

entre Armada de Chile y la Pontificia Univer-

sidad Católica de Chile y realizado por el La-

boratorio de Algas del Depto. de Oceanología

de la Universidad de Concepción, Chile.

Nuestro agradecimiento a los señores José

Cid y Edgardo Muñoz por su valiosa colabora-

ción en laboratorio y en terreno.

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—-

FRANJA

E DE

€ MACROCYSTIS

O j

ce A, e ; e

PUERTO

= a

TORO. “%*X

area estudiada

» TA a E AZ

EN “.

escala aprox. =50m

Fig. 1. Localidad investigada. En el recuadro superior ubicación geográfica del área. En la figura

principal distribución del “bosque” de M. pyrifera en Pto. Toro resaltando los sectores de colecta de

ejemplares con esporofilas.

Fig. 2. Ciclo de vida de Macrocystis pyrifera; A) Esporófito mostrando esporofilas fértiles en la base del

estipe; B) Esquema de una vista aumentada de un soro mostrando paráfisis y esporangios; C)

Zoósporas, biflageladas; D) Gametófito masculino mostrando órganos masculinos en el extremo de

filamentos; E) Oogonio en el extremo de filamentos del gametófito femenino; F) Oocélula fecundada

(esporófito) iniciando la primera división; G) Esporófito inicial y H) Esporófito joven con rizoide.

Fig. 3. Fases del ciclo biológico de M. pyrifera. A) Gametófitos femeninos en etapa inicial de desarrollo

mostrando filamentos no tabicados; B) Gametófito femenino cori formación de célula femenina en la

porción terminal de los filamentos, indicado por la flecha; C) Aspecto general de un gametófito

masculino y D) Etapas iniciales de desarrollo de un esporófito. La flecha muestra la sección de un

filamento compuesto por tres células.

1LO

al de gametóf

ón aumentada de un gametófito

gener

; A) Aspecto

1o de Macrocystis

ametófitos y estado inicial del esporóf

Fig. 4. G

C) Porci

élulas

ófito inicial constituido por dos c

ófito femenino y

B) Aspecto general de gamet

femenino mostrando espor

masculino;

Le a

KHO0SIDZA A

ve ¡ua

2) Ap"

LSO

VCD

cial de esporófito filamentoso

sporófito de 3 células unido todavía al gametófito

: B) Estado ini

joven;

EOS

[e Jide]

ds]

3.5

yoyo)

ha YN

q >

Fig. 6. Esporófito de M. pyrifera. A) Esporófito pequeño de aspecto redondeado mostrando una

porción rizoidal y B) Aspecto aumentado de un segmento de esporófito joven mostrando el inicio de

porción basal definitiva de la planta.

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORIAL UNIVERSITARIA, S.A.

EN EL MES DE AGOSTO DE 1982

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

GAYANA consta de una Serie Botánica, una Zoológica y una

Miscelánea, incluyéndose dentro de cada Serie trabajos biológicos

en su sentido más amplio.

Esta publicación tiene una periodicidad anual y su numeración es

continuada dentro de cada Serie.

GAYANA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION (CHILE)

aA==

Deseamos establecer canje con Revistas similares

Correspondencia. Biblioteca y Canje:

COMISION EDITORA

CASILLA 2407 APARTADO 10

CONCEPCION, CHILE

EDITORIAL UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

IMPRESO POR EDITORIAL UNIVERSITARIA

lo]

e ys ISSN 0016-5301

' GAYANA

BOTANICA 1982 N” 40

POSIBLES EFECTOS DE LA CONTAMINACION

SOBRE COMUNIDADES DEL LITORAL

ROCOSO

DE LA REGION DEL BIOBIO, CHILE

Krisler Alveal, Héctor Romo y Marcela Avila

¡ARDEN

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

PXRCUELETAD DE CIENCIAS BIGQEGSIEAS Y DE

RECURSOS NATURSAEES

UNTVERSIDAD DE COMNETECEON

EC HEYEE

EDITOR

Enrique Bay-Schmith B.

COMITE CONSULTOR

Miren Alberdi

Universidad Austral, Valdivia

Sergio Avaria

Depto. de Oceanología, Montemar

Nibaldo Bahamonde

Museo Nacional de Historia

Natural, Santiago

Danko Brncic

Universidad de Chile, Santiago

Eduardo Bustos

Universidad de Chile, Santiago

Hugo Campos

Universidad Austral, Valdivia

. Juan C. Castilla

Universidad Católica, Santiago

Eduardo del Solar

Universidad Austral, Valdivia

Raúl Fernández

Universidad de Chile, Santiago

Luis Ramorino

Depto. de.Oceanología, Montemar

Jorge Redón

Universidad de Chile, Valparaíso

Bernabé Santelices

Universidad Católica, Santiago

Federico Schlegel

Universidad Austral, Valdivia

José Stuardo

Universidad de Concepción, Concepción

Haroldo Toro

Universidad Católica, Valparaíso

ISSN 0016-5301

GAYANA

BOTANICA 1982 N*? 40

POSIBLES EFECTOS DE LA CONTAMINACION

SOBRE COMUNIDADES DEL LITORAL

ROCOSO

DE LA REGION DEL BIOBIO, CHILE

Krisler Alveal, Héctor Romo y Marcela Avila

UNIVERSIDAD DE CONCE PRO

CHEULE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I : 14 (1848).

Impreso en

EDrrORIAL UNIVERSITARIA

San Francisco 454-Casilla 10220

Santiago-Chile

POSIBLES EFECTOS DE LA CONTAMINACION SOBRE COMUNIDADES

DEL LITORAL ROCOSO DE LA REGION DEL BIOBIO, CHILE

Krisler Alveal, Héctor Romo y Marcela Avila

RESUMEN

Se efectuó un estudio en el litoral rocoso de la región del

Bío-Bío, con el propósito de conocer la estructura de las

comunidades costeras y detectar en base a ella, la existen-

cia de ambientes contaminados.

Se utilizó el índice de Sorensen para agrupar localida-

des afines y para detectar el grado de alteración de las

comunidades, se estudió la distribución log-normal de los

componentes (especies e individuos). Se complementó el

estudio con información sobre diversidad y uniformidad.

Los resultados principales indican que:

— existen localidades con ambientes litorales relativa-

mente normales (diversidad y uniformidad altos), y

— ambientes en situación de alteración (diversidad y uni-

formidad bajos).

Las comunidades litorales de Talcahuano, San Vicente

y Lirquén muestran signos de alteración, mientras que

aquellas de las otras localidades consideradas en este estu-

dio parecen estar en situación de normalidad.

ABSTRACT

A study was made on the rocky intertidal biota of the

Bio-Bio region Chile for the purpose of knowing the

structure of the coastal communities and to detect pollu-

ted areas. The Sorensen index was used for the grouping

of similar localities on the basis of communitie structure

and source of environmental disturbance.

The log-normal distribution of species and individual

was considered and complement with information on di-

versity and equitability of components. The main results

show that:

— there are localities with relatively normal intertidal

environments (high diversity and high equitability),

and

— disturbed environments (low diversity and low equita-

bility).

The littoral communities of Talcahuano, San Vicente

and Lirquén show signs of disturbance, whereas those of

the other localities considered in this study seem to be

undisturbed.

INTRODUCCION

Toda comunidad humana tiene derecho a un

entorno limpio y odenado. Desgraciadamen-

te, estas aspiraciones no siempre se cumplen,

menos aún en lugares donde, por condiciones

geográficas y sociales especiales, se manifiesta

toda una actividad industrial, pesquera o co-

mercial.

Variada es la gama de agentes que pueden

alterar las condiciones naturales de un lugar y

difícil poder encarar un problema de corte tan

complejo, cuya característica principal es su

implicancia multifacética.

La Comisión de estudio y Control Contra la

Contaminación Ambiental (CECCA) emitió

un informe referente a fuentes de contamina-

ción del medio acuático de la región del Bío-

Bío, en la que señala que el área se encuentra

bajo los efectos de ácido sulfúrico, lanolina,

colorantes, bicromato de sodio, provenientes

de industrias de paños, residuos de industrias

azucarera y de loza y de materiales proteicos y

aceitosos originados en industrias pesqueras.

Las industrias de acero y petroquímica

aportan” ácido sulfúrico, fenoles, amoníaco,

sulfato ferroso, carbonatos, cloruros, mercu-

rio, soda cáustica, ácido clorhídrico, aceites

lubricantes, hidrocarburos, clorados, etc.

En las industrias forestales y de papeles se

originan fibra, taninos, grasas, sulfuros, hi-

dróxidos, sales de cromo, anilinas, ácidos,

mercurio, ligninatos y en termoeléctricas y mi-

nas de carbón, temperaturas altas, cenizas, es-

coria, alquitranes, etc.

Además debe agregarse detergentes, mate-

Proyecto N* 2.08.66 de la Vicerrectoría de Investigación de la Universidad de Concepción

rial orgánico, bacterias, virus, cloro y pestici-

das acarreados por aguas de alcantarilla, ríos y

esteros.

Este estudio forma parte de un proyecto de

investigación más integral sobre contamina-

ción costera, efectuado en la región del Bío-

Bío y en el que se ha abarcado aspectos de

oceanografía física, oceanografía química y tó-

picos biológicos litorales y sublitorales. Especí-

ficamente, los resultados que aquí se presen-

tan son el primer acercamiento al problema

relativo a estructura de comunidades litorales

en áreas que están recibiendo la acción de

agentes contaminantes.

De todos los contaminantes del medio acuá-

tico marino, es el petróleo, quizás, el que más

impacto produce. En las costas chilenas han

ocurrido algunos desastres de barcos petrole-

ros como el del B/T Metula que el 9 de agosto

de 1974 varó en el Estrecho de Magallanes,

derramó más de 51.000 toneladas de petróleo.

Estudios efectuados en el área por Guzmán

(1976) señalan, de manera general, que hubo

marcado daño en la flora y fauna sublitorales y

toda la zona intermareal, aves marinas y vege-

tación terrestre litoral, fue significativamente

afectada.

Gallardo y Cid (1980) en un estudio relacio-

nado con el desastre del B/T' Metula, indican

que las comunidades fueron afectadas por re-

cubrimiento de petróleo el que, por efecto

principalmente de corrientes, no tuvo la opor-

tunidad de afectar niveles sublitorales.

Santelices et al. (1977) y Santelices y Castilla

(1977), describen las comunidades litorales de

playas rocosas en el área de Bahía Quintero

(32%44'S; 7331'"W) afectada por el derrame

de petróleo del Northern Breeze y concluyen

que es imposible evaluar con certeza la magni-

tud del daño causado por este desastre.

Hoffmann (1978) estudia la contaminación

por mercurio del estuario Lenga (Bahía San

Vicente) y áreas vecinas, efectuando análisis

de acumulación mercurial en organismos de

la flora y fauna. Sus conclusiones generales

indican la necesidad de efectuar tratamiento

de desechos líquidos provenientes de indus-

tria petroquímica, en atención a la alta concen-

tración de mercurio liberado al ambiente.

El propósito fundamental de este estudio es

conocer la estructura de las poblaciones y co-

munidades marinas que habitan el litoral ro-

coso de la región del Bío-Bío e inferir, sobre

la base de estos resultados y en forma tentatl-

va, el grado de alteración que presenta cada

una de las localidades muestreadas.

AREA DE ESTUDIO

El área considerada en este trabajo (1,e., Bahía

Coliumo, Bahía Concepción, Bahía San Vi-

cente y Golfo de Arauco) (Fig. 1) es difícil de

caracterizar, por la infinidad de microambien-

tes presentes en su franja costera. Existen

playas arenosas, pequeñas, protegidas del

oleaje, playas de arena en arcos grandes y

extendidos, abiertas al océano, recibiendo ge-

neralmente oleaje suave. Ensenadas rocosas

muy protegidas y costa de macizos rocosos

abruptos donde el oleaje choca con gran fuer-

za, es la tónica de ambientes abiertos al sur o al

oeste.

En el área hay influencia de esteros y ríos,

que modifican la salinidad en áreas vecinas a la

desembocadura y que en los meses de invier-

no, aportan una gran cantidad de material en

suspensión.

En la parte norte del área de estudio está

Bahía Coliumo (Fig. 1A), con costas arenosas y

rocosas y donde la actividad principal de la

población se refiere a pesca y turismo, espe-

cialmente en los meses de verano.

Al sur de Coliumo se encuentra Bahía Con-

cepción (Fig. 1B) que reúne las condiciones de

Puerto Militar, Pesquero y Comercial y que

está afectada por una actividad humana litoral

importante en los puertos de Talcahuano,

Penco, Lirquén y Tomé. La bahía está abierta

al norte y su costa está formada principalmen-

te por macizos rocosos y playas de arena. En

ella desembocan el río Andalién y estero El

Morro, ambos de poco caudal, excepto en in-

vierno. Esta área recibe desagúes urbanos e

industriales.

Más al sur se encuentra bahía San Vicente

(Fig. 1C), caracterizada por presentar un arco

amplio y abierto hacia el oeste con litoral roco-

Río

Andalifn

LOCALIDADES DE MUESTREO

Pta. Banderola

. Los Morros

Lirquén

Penco

. Talcahuano

Pto. San Vicente

Estuario Lenga

. Lenga

. Ramuntcho

. Cta. Reque

. Desembocadura Bío--Bío

. Playa Blanca

Río . Playa El Blanco

Carampangue (14. Colcura

. Chivilingo

. Río Tubul

. Tubut

. Trana

. Pta. Lavapie

0D 0 Yu Lon

: BAHIA COLTUMO

: BAHIA CONCEPCION

: BAHIA SAN VICENTE

: GOLFO DE ARAUCO

Fig. 1. Area investigada mostrando la ubicación de las localidades estudiadas.

so en sus extremos y una extensa playa de

arena en su parte central. El puerto San Vi-

cente, ubicado en la parte norte de esta bahía,

tiene una actividad principalmente pesquera y

de cabotaje. En la parte central se vacian los

residuos procedentes de la industria acerera

Huachipato, en la parte sur, desemboca el es-

tero Lenga, receptor (alternativo) de indus-

trias petroquímicas.

Hacia el sur está el Golfo de Arauco (Fig.

1D) donde se efectúan actividades pesqueras,

de la industria de celulosa con vaciados a la

costa y actividad minera del carbón. A lo ante-

rior debe agregarse el material urbano e in-

dustrial transportado al mar por el río Bío-

Bío (Fig. 1), el más importante de la región y

desagúes de las ciudades de Coronel y Lota.

Desemboca también en esta área, el río Tu-

bul, que arrastra material arenoso y desechos

MATERIAL Y

El primer muestreo se efectuó en marzo y

abril de 1979 en las 19 localidades indicadas

en la Figura 1.

Se extrajo un total de 503 muestras, utili-

zando cuadrantes de 20 x 20 cm de lado, en

transectas perpendiculares a la línea costera.

En esta oportunidad las muestras fueron

identificadas según el nombre de los organis-

mos dominantes de la comunidad. En cada

nivel muestreado se obtuvo un mínimo de tres

réplicas.

El primer muestreo se utilizó para identifi-

car las comunidades costeras, detectar aque-

llas frecuentes en las diferentes localidades y

seleccionar estaciones para considerar, en el

segundo muestreo, los parámetros de diversi-

dad, uniformidad y distribución log-normal

de individuos por especie.

El segundo muestreo se efectuó en sep-

tiembre de 1979, en las localidades de Coliu-

mo, Lirquén, Talcahuano, San Vicente, Playa

Blanca, Colcura, Caleta Trana y Punta Lava-

pié (Fig. 1).

En esta oportunidad, el muestreo se efec-

tuó en torno al cinturón de Perumytilus purpu-

ratus, debido a que en el análisis del primer

muestreo, apareció como la especie dominan-

te más conspicua a lo largo del área de estudio.

de la población de pescadores ubicada próxi-

ma a su desembocadura. En verano, esta zona

es regularmente visitada por veraneantes pro-

venientes de ciudades cercanas.

La extensión total considerada en este estu-

dio es de 166 km de línea costera y el ancho de

la franja intermareal fluctúa entre 2 y 20 m,

dependiendo de la inclinación del sustrato y

oleaje. Las variaciones de marea alcanzan has-

ta 200 cm.

La costa estudiada es fundamentalmente

de macizos rocosos y los organismos forman

bandas horizontales en las que destacan las

poblaciones de Chthamalus cirratus, Perumytilus

purpuratus, Iridaea lammnanordes y Gigartina pa-

pilata.

Las localidades visitadas se especifican en la

Fig. 1.

METODOS

Se obtuvo nueve muestras por localidad, tota-

lizando 72 muestras en las ocho estaciones

seleccionadas. Todas fueron procesadas se-

gún la siguiente secuencia de actividades: se-

paración, identificación de especies, cuantifi-

cación, registro de peso seco y análisis bioma-

temático.

Con las especies ya separadas e identifica-

das se efectuó un análisis de similitud, utilizan-

do el índice de Sorensen (1948) con el objeto

de agrupar aquellas localidades más afines

por su composición específica. Esta agrupa-

ción se realizó elaborando un dendrograma

según la metodología ejemplificada por

Mountford (1962), según cita Southwood

(L975%

Para detectar el grado de alteración de las

comunidades por procesos de contaminación

u otros agentes perturbadores, se utilizó la

metodología propuesta por Gray y Mirza

(1979) la cual considera un estudio de la distri-

bución log-normal (Preston, 1948) para cono-

cer las relaciones numéricas entre especies y la

abundancia de individuos.

Por último, y con el objeto de complemen-

tar la evaluación del grado de deterioro de las

comunidades costeras, se efectuaron análisis

de los índices de diversidad de Shannon-

Wiener, propuesto por MacArthur y MacArt-

hur (1961) y Watt (1964) y un análisis del

índice de uniformidad propuesto por Lloyd y

Gheraldi (1964).

Debido a que algunas muestras presenta-

ban poblaciones dominantes no cuantificables

en número y con el objeto de homogeneizar el

tratamiento de los datos cuantitativos (distri-

bución log-normal, diversidad y uniformi-

dad), las poblaciones de mitílidos (Perumytilus,

Aulacomya y Semimytilus) fueron excluidas del

análisis cuando constituían la especie domi-

nante. Solamente se les consideró cuando es-

tos géneros aparecieron como fauna acompa-

ñante en las muestras dominadas por algas.

RESULTADOS

Con el objeto de identificar las comunidades

litorales más típicas y frecuentes en áreas ro-

cosas, se procedió a efectuar un intenso pro-

grama de muestreo y análisis, lográndose el

estudio de un número superior a 500 mues-

tras. Este primer muestreo permitió determi-

nar sus componentes bióticos, su ubicación en

la playa, su distribución horizontal, al mismo

tiempo que conocer los valores de diversidad

de todas las comunidades intermareales.

Sobre la base de esta primera información

se identificó como comunidad de referencia a

P. purpuratus, procediendo en el segundo

muestreo a considerar en estudio los niveles

inmediatamente superiores a inferiores a ella,

niveles en los que se incluyeron las poblacio-

nes de Iridaea laminarioides, Gigartina papillata

y Ulva lactuca, las segundas en importancia en

el litoral.

Los estudios efectuados en ocho estaciones

seleccionadas, se basaron en 72 muestras en

las que se obtuvo 94 especies del macrobentos.

Se consideró a todas las especies, incluyendo

aquellas que se registró como presentes, debi-

do a que fue imposible su cuantificación (al-

gas, cirripedios y anfípodos). En la Tabla 1 se

indica la representatividad de especies por lo-

calidad. En el Anexo 1 se muestra el detalle de

frecuencia de individuos por especie en cada

localidad muestreada.

Estos resultados muestran tendencia a una

disminución del número de especies desde

localidades ubicadas al extremo sur del Golfo

de Arauco hasta San Vicente. En bahía Con-

cepción, a partir de Talcahuano, hasta la parte

externa de dicha bahía por el norte (Coliumo),

se observa nuevamente aumento del número

de especies.

El análisis de similitud permitió separar

cuatro grupos de estaciones (Fig. 2).

Un primer grupo es aquel constituido por

playa Blanca y Colcura, geográficamente

adyacentes y pertenecientes al sistema norte

del Golfo de Arauco. El grupo 2 comprende

San Vicente, Caleta Trana y Punta Lavapié;

estas dos últimas, localidades vecinas y ubica-

das en el extremo sur del Golfo de Arauco.

Las estaciones del grupo 3, Lirquén y Tal-

cahuano son localidades de bahía Concepción.

El grupo 4 está constituido por Coliumo, ubi-

cado en la boca de bahía Coliumo.

En el dendrograma se observa que los gru-

pos 1, 2 y 3 tienen niveles de similitud relativa-

mente altos (valores de Q.I. superiores a 0.60),

TABLA 1

NUMERO TOTAL Y PORCENTAJE DEL NUMERO

TOTAL DE ESPECIES, EN OCHO LOCALIDADES

DEL LITORAL ROCOSO DE LA REGION DEL

BIOBIO. SEGUNDO MUESTREO. TOTAL DE

ESPECIES COLECTADAS: 94

Area Geográfica N? Especies % N* Especies

GOLFO DE ARAUCO:

Punta Lavapié 35 37,23

Cta. Trana 36 38,30

Colcura 35 37,23

Playa Blanca 29 30,85

BAHIA SAN VICENTE:

San Vicente 28 29,79

BAHIA CONCEPCION:

Talcahuano 31 32,98

Lirquén 41 43,62

BAHIA COLIUMO:

Coliumo 63 i 52,13

31,0

20,9

> 0.8

UU)

1 0,7

10.6

30.5

2001

1 == "PLAYA BLANCA GRUPO 1

PA CURA

3 — SAN VICENTE

PO 2

di TRANA a

5 — PUNTA LAVAPIE

6 — LIRQUEN

7 — TALCAHUANO ) Sas

8 — COLIUMO h GRUPO 4

Fig. 2. Similitud en composición específica entre 8 locali-

dades de la Región del Biobío.

a P LAVAPIE

BTRANA

% ACUMULATIVO DE ESPECIES

12)

4 COLCURA

Á P BLANCA

en tanto que el grupo 4 constituido por la

localidad de Coliumo, se une al resto de los

grupos a un nivel de similitud comparativa-

mente bajo (Q.I. = 0.48).

El análisis de distribución log-normal de

especies en clases geométricas de individuos

(Preston, 1948), efectuado según el método de

Gray y Mirza (1979), indica que Trana, Punta

Lavapié y Playa Blanca, pertenecientes al Gol-

fo de Arauco y San Vicente, están siendo afec-

tados por factores modificantes del ambiente,

lo cual implica una alteración en la distribu-

ción log-normal del conjunto de poblaciones

de invertebrados en el litoral (Fig. 3), en tanto

que en Talcahuano y Coliumo se mantiene

una distribución muy cercana a la normal.

Esto puede indicar que estas comunidades no

han estado nunca sometidas a procesos de al-

teración (i.e., contaminación o extracción de

especies) o que estuvieron alteradas en el pasa-

do y se encuentran hoy ya adaptadas a nuevas

condiciones ambientales.

El mismo estudio se efectuó con localidades

agrupadas mediante el índice de similitud de

e SAN VICENTE

e TALCAHUANO

y LIRQUEN

Y COLIUMO

y YU bios,

4 1234504509

TZ TELAS AGIEJONS

12 3 05.16

AAA A A!

1.2 3 415167748::910

1230456 7 880

E E E E

¡ri all

ES O O O A E ES |

EME

AA A

1iZz03rb 56; 7

CLAS.E

GEOMETRICA

Sorensen (Fig. 4). El resultado indica que los

grupos 1, 2 y 3 son localidades que muestran

comunidades en proceso de alteración, en

cambio en Coliumo (grupo 4), continuarían

en condiciones normales.

Diwersidad de especies.

La fauna de invertebrados del litoral rocoso

de la región del Bío-Bío fue analizada sobre la

base del índice de diversidad de Shannon-

Wiener, índice de uniformidad y riqueza de

especies.

Los resultados son presentados en la Tabla

2, donde las localidades están ordenadas se-

gún los grupos resultantes del análisis del índi-

a GRUPO 1

ce de similitud. En general se observa que al

aumentar el número de especies en cada gru-

po, aumenta el índice de diversidad y el índice

de uniformidad. Ocurre una excepción en el

grupo 3, ya que Talcahuano presenta 15 espe-

cies y Lirquén 26, en circunstancias que tanto

la diversidad como la uniformidad de esta últi-

ma son menores que los índices registrados

para Talcahuano.

Al considerar estos parámetros, agrupando

las localidades por áreas geográficas, se obser-

va que el área que presenta los más bajos índi-

ces, es bahía San Vicente; Coliumo presenta la

mayor diversidad y bahía Concepción la

mayor uniformidad (Tabla 3).

S.VICENTE-TRANA—P LAVAPIE

o GRUPO 2

PBLANCA-COLCURA

A GRUPO 3

LIRQUEN-TALCAHUANO /9

A Te GRUPO 4 4

uy COLIUMO ¿ a 2

¡0)

(09)

uJ >

as0 y

> a a

)

= ¡'OIMO)

1 5

E E A E A A A

e E ri

j GRUPO 4

o A e

219 ENE

GRUPO 3

A AS

Latid de 5 6.7. 83910

GRUPO 2

ITA 307 8:39 10

CLASE GEOMETRICA GRUPO 1

Fig. 4. Porcentaje acumulativo de especies por clases geométricas de individuos por especies

encontradas en localidades afines, detectadas mediante el indice de Sorensen.

Tabla 2.

RIQUEZA DE ESPECIES, INDICE DE DIVERSIDAD DE SHANNON-WIENER Y UNIFOR-

MIDAD.

Grupo Localidad N* Especies Diversidad Uniformidad

(S) (D = bits/indiv) (E)

1 Playa Blanca 177, 1,165 0,285

Colcura 23 2,895 0,640

San Vicente 18 1,715 0,411

2 Punta Lavapié 20 2,315 0,596

Caleta Trana 21 3,000 0,683

3 Lirquén 26 2,986 0,635

Talcahuano 15 SES 0,797

4 Coliumo 51 3,738 0,659

Tabla 3

DIVERSIDAD Y UNIFORMIDAD DE 4 AREAS GEOGRAFICAS DE LA REGION

DEL BIOBIO.

Area Geográfica Localidades Diversidad Uniformidad

D = bits/indiv. (E)

Pta. Lavapié

Cta. Trana

Golfo de Arauco Colcura 2,461 0,492

Playa Blanca

Bahía San Vicente San Vicente 1,715 0,411

Bahía Concepción Talcahuano 3,364 0,692

Lirquén

Coliumo Coliumo 3,738 0,659

Según estos datos, Bahía San Vicente esta-

ría en pleno proceso de alteración y con efec-

tos más notables que Golfo de Arauco. La

comunidad intermareal de Bahía Concepción

estaría en proceso de estabilización ante con-

diciones de alteración mantenidas desde el pa-

sado y Coliumo sería la localidad con una co-

munidad litoral más cercana. a condiciones

normales.

En estero Lenga, lugar inundado por agua

marina durante la pleamar, las observaciones

indican una perturbación marcada, perturba-

ción que en lo que se refiere a algas se caracte-

riza por: (i) ausencia de una pradera estable de

Gracilaria verrucosa (existente en el pasado) y |

(ii) presencia abundante de Ulva lactuca en los:

remansos interiores, especie dominante y re-

sistente a procesos de contaminación. Ambos

aspectos pueden atribuirse a vaciados de Cla,

CIO" en el cauce (Informe CECCA, 1975).

La comparación del estuario del estero

Lenga (Bahía San Vicente) y del estuario del

río Tubul (Golfo de Arauco) ofrece realmente

diferencias notables en su constitución bioló-

gica ya que mientras el segundo ha mantenido

inalterada su pradera de Gracilaria, el ambien-

te estuarino de Lenga ha ofrecido condiciones

negativas a la recolonización por esta alga.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

A. ANTECEDENTES SOBRE CONTAMINANTES DEL

AREA.

Los resultados logrados en los estudios sobre

contaminación del litoral de la región del Bio-

bío (Informe Serplac, U. de Concepción,

1980), entregan el siguiente panorama sobre

contaminantes del área.

Se indica la presencia de mercurio prove-

niente de industrias, aunque se ha comproba-

do que ríos y esteros efectúan un aporte natu-

ral al medio. La presencia del plomo (Pb) tam-

bién ha sido detectada especialmente en los

sedimentos del río Biobío en cantidades de

12-20 ppm.

Derivados del petróleo son contaminantes

comunes en casi todo el litoral y provienen de

industrias, de refinerías de petróleo y activida-

des navieras. Según algunos autores, no ten-

drían un carácter tóxico para la vida acuática,

afirmación que se opone a las conclusiones de

North et al. (1964), quienes indican que el

petróleo afecta la fisiología y sobrevivencia de

organismos marinos, llegando incluso a su

destrucción total en dependencias de las canti-

dades y características del contaminante.

El uso de pesticidas (DDT y DDE,) es en la

actualidad uno de los métodos más usados en

faenas agrícolas para el control de plagas. Des-

graciadamente éstos son arrastrados al mar,

donde pueden mantenerse en el agua, formar

parte de los sedimentos o ser acumulados por

los seres vivos. La presencia de DDT ha sido

comprobada en el Golfo de Arauco, Bahía San

Vicente y Bahía Concepción y en material bio-

lógico infiriéndose su procedencia de las re-

giones IX y X y transportadas por corrientes

marinas hasta nuestra zona (Informe Serplac-

U. de Concepción, 1980).

Finalmente, cabe mencionar la presencia

de detergentes y bacterias en el área aportados

por desagúes domésticos y de industria, los

que en algunos casos (bacterias) pueden ser

altamente peligrosos al acumularse en orga-

nismos marinos (moluscos) utilizados en la ali-

mentación humana.

En atención a lo señalado, podemos indicar

que las diferentes localidades están afectadas

por compuestos que junto a la acción de facto-

res físicos y químicos son responsables de las

características biológicas del área.

B. CARACTERÍSTICAS BIOLÓGICAS DE LAS ÁREAS

ESTUDIADAS Y POSIBLE INFLUENCIA DE AMBIEN-

TES CONTAMINADOS.

Es importante indicar que variaciones del ni-

vel de mar, por efecto de marea y oleaje, facili-

tan el contacto de cualquiera sustancia conta-

minantes con todos los niveles litorales, por lo

que es conveniente considerar como una sola

comunidad a toda la biota intermareal para los

efectos de establecer variaciones en los pará-

metros de diversidad, uniformidad, riqueza

de especies, biomasa.

Referente a valores de biomasa, varias po-

blaciones de distribución amplia en la región,

presentaron variaciones notorias en concor-

dancia con su presencia en lugares con mayor

o menor grado de contaminación.

Así por ejemplo, P. purpuratus e I. lamimna-

riordes fueron menos abundantes en San Vi-

cente y Talcahuano (Figs. 5 y 6) y en varias

comunidades el número de especies consti-

tuyentes fue menor en estas localidades, au-

mentando en número hacia Punta Lavapié y

Coliumo, lugares más alejados de centros con-

taminados.

Sin embargo, al analizar los valores de di-

versidad y uniformidad de las comunidades

de las diferentes estaciones muestreadas, con-

siderando: (a) agrupación de localidades se-

gún su grado de similitud específica, (Tabla 2)

y (b) agrupación de localidades por área geo-

gráfica (Tabla 3), se detectó las siguientes ten-

dencias:

Caso A: en los grupos 1 y 2 la diversidad y la

uniformidad tienden a disminuir hacia aque-

llas localidades o centros con mayor densidad

humana y mayor actividad industrial. En el

grupo 3 esta situación no es clara, observándo-

se altos índices de diversidad y uniformidad.

Coliumo, lugar relativamente alejado de

centros de alteración ambiental, mantiene el

más alto índice de diversidad y uniformidad.

Caso B: al agrupar localidades por área geo-

gráfica, los índices presentan valores bajos en

bahía San Vicente, intermedios en las locali-

ONNITO9

VyUYyWVd d

Nod > AAA ESE

RAE AA

ONVNAHVITVWL

31N3A 'S

VIONIT “9

3N038 “9

VyNOVIOBWISIO

VINVI8B q

09NV18 13

O9NITVIAIHO

Vyn97109

VNVyl 9

31YVAVA dy

(22128007

o Ln

"/89) 093S 0S3d

Fig. 5. Distribución de biomasa de Iridaea laminarioides, desde el Golfo de Arauco a Bahía Coliumo.

O0NnNI709

N3NOYI7

ONVNHVI TVL

31N391A NVS

VINVI18 d

vung709

VNVyY1 “9

31d WAV 1d

300

200

(¿43007)/Y9) O9IS OSÍd

Fig. 6. Distribución de biomasa de la población de Perumytilus purpuratus en localidades del Golfo de

Arauco, Bahía Concepción y Bahía Coliumo.

z 1.0

<Á

E 0.8

<Á

n 0.6

pe |

[o]

0 02) 1: PLAVAPIE — 5-P BLANCA

2 2-C.TRANA 6- LIRQUEN

Z 3-COLCURA 7- TALCAHUANO

S ool 4-COLIUMO 8-S. VICENTE

Fig. 7. Grado de similitud entre localidades segun fuentes

de alteración ambiental.

dades del Golfo de Arauco y altos en Bahía

Concepción y Coliumo.

Conclusiones más claras se desprenden al

relacionar actividades de disturbios ambienta-

les con áreas geográficas del litoral de nuestra

región (Tabla 4 y Fig. 7), relación que permite

detectar el grado de afinidad, en forma cuali-

tativa, entre las localidades estudiadas.

Los resultados señalan que Talcahuano,

San Vicente, Lirquén, serían las localidades

sujetas a mayor número de disturbios quedan-

do en situación intermedia playa Blanca y co-

mo localidades menos alteradas, Pta. Lavapié,

Trana, Colcura y Coliumo (Tabla 4).

Con respecto a la detección de comunida-

des naturales alteradas basada en la distribu-

ción log-normal de individuos por especies,

los resultados indican que las localidades de

Pta. Lavapié, Trana, playa Blanca y San Vi-

cente muestran signos de alteración, en cam-

bio el resto de las localidades señala una situa-

ción de estabilidad (Figs. 3 y 4).

Esta estabilidad no implica necesariamente

una situación natural, ya que una comunidad

sometida a la acción constante de un agente

perturbador puede con el tiempo alcanzar un

nivel de estabilidad acondicionada a esta nue-

va situación. Esta modalidad sería el caso de

Talcahuano que evidencia un bajo número de

especies, baja biomasa de algunas comunida-

des y un nítido ajuste a la distribución log-

normal, según el método de Gray y Mirza (op.

cit.).

Al analizar la distribución log-normal,

agrupando localidades según grupos afines

(Fig. 4), se detecta alteración en los tres prime-

ros grupos, en tanto que Coliumo muestra

normalidad.

Por último, al considerar el análisis de las

localidades según áreas geográficas, se dedu-

cen alteraciones en las comunidades interma-

reales del Golfo de Arauco, Bahía San Vicente

Tabla 4

LISTADO DE FACTORES Y ACTIVIDADES QUE SERIAN CAUSANTES DE

DISTURBIOS EN EL AREA DE LA REGION DEL BIOBIO.

Punta Caleta

Lavapié Trana

Turismo

Influencia de esteros

Influencia de ríos

Presencia humana litoral > +

Desechos de carbón

Actividad extractiva litoral + +

Tratamiento productos pesqueros

Vaciados domésticos

Transporte portuario

Desechos y combustibles

Desperdicios domésticos

Vaciados de industrias pesadas

Vaciados de industrias ligeras

Playa San Talca-

Colcura Blanca Vicios * Kane Lirquén Coliumo

+ + ? - -

+ - - > +

+ +

> 37 + + Sh 37

+ - -

+ =>

o + + -

- - -

as Gs +

+ ar Sr

Sr + + +?

=r qn ==

y bahía Concepción, mientras que Coliumo

muestra normalidad.

Si se considera que los organismos de la

fauna necesitan tener a su disposición un cier-

to nivel o tenor de oxígeno para realizar sus

procesos metabólicos, entonces las apariciones

estacionales de masas de agua con bajo conte-

nido de oxígeno (<1 ml/l y concentraciones

altas de nutrientes provenientes de la corrien-

te de Gunther (aguas ecuatoriales) como con-

secuencia de procesos de sugerencia, deben

afectar a las poblaciones litorales en sus esta-

dos adultos, juveniles, larvarios o de esporas.

El resultado de este proceso natural reper-

cutirá en la expresión numérica y de biomasa

de todas las poblaciones del área, generando

en el tiempo uno de los tantos sistemas pulsáti-

les ya detectados en poblaciones y comunida-

des naturales en todos los océanos del mundo.

El problema tendrá carácter más crítico ya que

a la demanda de oxígeno por parte de seres

vivos, debe sumársele la demanda de oxígeno

por procesos de oxidación de materia orgá-

nica. Sin embargo, en el sistema intermareal

rocoso, el déficit de oxígeno sería minimizado

debido a la agitación de agua y a la presencia

de abundantes poblaciones de algas.

C. CONSIDERACIONES FINALES.

El sector estudiado es un área con una gran

diversificación de la actividad humana y don-

de es dable esperar que ella tendrá su repercu-

sión en el área costera circundante. No es ex-

traño entonces la detección de detergentes, de

metales pesados (Hoffmann, 1978), de hidro-

carburos derivados del petróleo, pesticidas y

otros contaminantes en los sedimentos, en el

agua y animales filtradores.

El problema, desde el punto de vista bioló-

gico es complejo, muchos de estos compuestos

tienen carácter específico y su efecto nocivo se

suma al efecto generalizado de un ambiente

multicontaminado y donde la distribución y

abundancia de componentes de la flora y fau-

na no entregan siempre una relación causa

efecto clara ya que sus fluctuaciones en el

tiempo no han sido medidas. Solamente cuan-

do el desastre es tan claro y definido (case

estero Lenga), es posible valorar sin equívocos

los desastrosos efectos de un ambiente artifi-

cialmente modificado sobre la biota que sus-

tenta.

Específicamente en Lenga, caracterizado

por ser un lugar altamente contaminado, se

detectó perturbación asociada a los siguientes

hechos: (1) ausencia de una pradera de Gracila-

ria verrucosa existente en el pasado en el lecho

del estero, y (1i) presencia abundante de Ulva

lactuca, especie conocidamente resistente a

ambientes contaminados.

Al efectuar una comparación de la situa-

ción biológica del estuario Lenga con la del río

Tubul existente en el Golfo de Arauco, éste

ofrece un aspecto diametralmente opuesto, ya

que mantiene en toda su plenitud e inalterada

su pradera de Gracilana.

Un programa de depuración ambiental en

estero Lenga debe contemplar fundamental.

mente la repoblación del área con Gracilaria,

considerando además una ampliación del sis-

tema de renovación del agua, factor que con-

tribuirá en gran medida a la mejor y más rápi-

da recuperación física y biológica del lugar.

Los signos de alteración de algunas locali-

dades del Golfo de Arauco (Punta Lavapié,

Trana, Playa Blanca) deben atribuirse princi-

palmente a efectos de la manipulación del lito-

ral en procesos de extracción de recursos, al-

gas y moluscos.

Al relacionar actividades causantes de dis-

turbios ambientales reunidos en items como

actividad industrial, portuaria, colectores pú-

blicos, cursos de agua y actividades litorales en

general, en las localidades elegidas, se puede

concluir que: (a) Talcahuano, San Vicente y

Lirquén serían localidades cuyas comunida-

des litorales están sujetas a mayor número de

disturbios, (b) Playa Blanca estaría en situa-

ción intermedia y (c) en situación más natural

Colcura, Trana, Punta Lavapié y Coliumo.

Considerando toda la información lograda,

así como las actividades de diversa índole que

se llevan a cabo en el litoral, es dable indicar

que existen áreas en situación conflictiva, co-

mo bahía Concepción, San Vicente y estero

Lenga y que por la amplia gama de factores

causantes de disturbios, se infiere que la posi-

bilidad de normalizarlas es difícil, en cambio

en el resto de las áreas, los datos indican que

existe aún un cierto grado de normalidad, por

lo que la recuperación ambiental cae en un

nivel de factibilidad.

REFERENCIAS

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la contaminación ambiental en la región de Con-

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WaTT, K.E. 1964. Comments on fluctuations of

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ANEXO 1.

MATRIZ PRELIMINAR DE ESPECIES CLASIFICADAS POR CATEGORIAS TAXONOMICAS MAYORES

COLECTADAS EN OCHO LOCALIDADES DE LA VIII REGION. (+ = PRESENCIA DE

ESPECIES NO CUANTIFICADAS). SEGUNDO MUESTREO.

CALETA

TRANA

PUNTA

LAVAPIE

ESPECIES

COLIUMO

COLCURA

LIRQUEN

SAN

VICENTE

PLAYA

BLANCA

TALCAHUANO

Mollusca

Perumytilus purpuratus

Trimusculus peruvianus

Fissurella maxima

Chiton granosus

Collisella araucana

Collisella sp.

Acanthina monodon

Tegula atra

Semimytilus algosus

Chiton cummings:

Scurna parasitica

Collisella variabilis

Collisella zebrina

Concholepas concholepas

Fissurella radiosa

Chiton latus

Collisella ceciliana

Littorina araucana

Mesodesma sp.

Brachydontes granulata

Aulacomya ater

Fissurella oriens

Collasella orbigni

Acanthopleura echinata

Fissurella latemarginata

Tonicia elegans .

Matrella sp.

Choromytilus chorus

Crepipatella dilatada

Nassarius gay

Polychaeta

Boccardia polybranchia

Halosydna sp.

Pseudonereis gallapagensis

Penmereis falklandica

Syllis magdalena

Nereis callaona

Steggoe sp.

Phyllodocidae

Perinereis longidonta

Dodecacenia sp.

Lumbrineris araukensis

Phragmatopoma moerchi

Terebellidae

Polynoidae

Pisionidae

Lysateridae

Eunicidae

153

= Q09 JO gl

159)

= 00

N NN —= N 00 0 —= —= (DO BB (0 N OQ

223

238 1944

101 97

1183 7

ANEXO 1. (Continuación).

CALETA

TRANA

PUNTA

LAVAPIE

COLIUMO

COLCURA

LIRQUEN

SAN

VICENTE

PLAYA

BLANCA

TALCAHUANO

ESPECIES

Sabellidae

Marphysa corallina 10

Plathynereis magalhaensis l

Crustacea

Acanthocyclus gayi 5 14 43 5 26 8 10 7

Taliepus marginatus l

Dynamenella eatoni 9

Dynamenella tuberculata 15

Isocladus sp. 2

Taliepus dentatus 2

Tanaidacea

Pilumnoides perlatus

Chthamalus cirratus

Chthamalus scabrossus

Balanus flosculus

Balanus psittacus

Amphypoda

—_

++ +++

H+ +++

++ +++

+H++++

H++++

FF 44D

+++++

Otros grupos (Fauna)

Nemertina

Actiniaria

Nematoda

Insecta (larvas)

Notoplana chercheae (Plan.) 23 3

Picnogonida 8

Loxechinus albus (Echin.) l 1

Discinisca sp. 16

43 99 33 89 17 149 20

6 1 20

N TU O

Chlorophyta

Enteromorpha intestinalas - EE

Ulva lactuca + + + + ZE TE + Ye

Phaeophyta

Ectocarpus sp. +

Soytosiphon lomentaria E

Colpomenia sp. +

Rhodophyta

Gigartina sp. $

Iridaea laminarioides ES ES ad $

Gelidium pseudointricatum

Ceramium rubrum 2 + +

Gelidium filicinum

Gigartina chamissot

Ceramium dozei

Porphyra columbina + E + 35

Polysiphonia sp. +

Iridaea membranacea x

Grateloupna sp.

Gymnogongrus furcellatus + Es

Bostrychia sp. + +

HFRR++++++

++++