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BOTANICA VOLUMEN41 NUMEROS1-2 1984

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UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

ES EN

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS

Y DE RECURSOS NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA:

Patricio Rivera R.

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR:

Oscar Matthei J.

REPRESENTANTE LEGAL:

Guillermo Clericus E.

PROPIETARIO:

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GUILLERMO TELL >

Universidad de Buenos Aires, Argentina

HAROLDO TORO

Universidad Católica, Valparaíso

ISSN 0016-5301

GAYANA

BOTANICA VOLUMEN 41 NUMEROS 1-2 1984

CONTENIDO

KALIN ARROYO, M.T., MARTICORENA, C. y C. VILLAGRAN. La flora de la Cordillera

de Los Andes en el área de Laguna Grande y Chica, III Región, Chile ..............0.o....o..ooo... 3

MARTICORENA, C. y M.T. KALIN ARROYO. El género Bartsia L. (Scrophulariaceae) en Chile.... 47

MATTHEI, 0. El género Muhlenbergia Schreber (Poaceae)en Chile ...............ooooooooooooooooo 53

KOCH, P. y P. RIVERA. Contribución al conocimiento de las diatomeas chilenas. III.

El género Chaetoceros Ehr. (Subgénero Phaeoceros Gran) .........ooooocoocconcccrcccco amos 61

PARRA, 0.0., GONZALEZ, H. and M. GONZALEZ. A comparision of epiphytic diatom

assemblages attached to filamentous algae in lotic freshwater habitats of Chile ................ 85

MUÑOZ, M., ROMO, H. y K. ALVEAL. Efecto de la salinidad en el crecimiento de tetras-

porofitos de Gracilaria verrucosa Hudson Papenfuss (Rhodophyta, Gigartinales)............... 119

ROMO, H., ALVEAL, K. y M. AVILA. El efecto de la poda en sobrevivencia, tamaño y

rendimiento de Macrocystis pyrifera (L.) Ag. (Lessoniaceae) de Isla Navarino (Chile) ........ 127

COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS:-: 000000... ts A A AS 136

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CH TI ESE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente cono-

cerse sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio

de ellos””.

CLAUDIO GAY, Hist. de Chile, 1:14 (1848)

Esta revista se terminó de imprimir en los talleres de Editora e Impresora

Universidad de Concepción, EDUDEC, el 30 de octubre de 1984, la que sólo

actúa como impresora.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

ISSN 0016-5301

LA FLORA DE LA CORDILLERA DE LOS ANDES EN ELAREA DE

LAGUNA GRANDE Y LAGUNA CHICA, III REGION, CHILE

THE FLORA OF THE CORDILLERA DE LOS ANDES IN THE AREA OF

LAGUNA GRANDE AND LAGUNA CHICA, III REGION, CHILE

Mary T. Kalin Arroyo (1)

Clodomiro Marticorena (2)

Carolina Villagrán (1)

RESUMEN

Se estudia la flora de la Cordillera de

los Andes del interior de Vallenar entre el

área de Conay y las cuencas de Laguna

Grande y Laguna Chica (1600-4300 m)

(2830 - 20200'S y 69%45” - 70%15"W), pro-

vincia de Huasco, III Región, Chile, ba-

sándose en materiales colectados y ob-

servaciones hechas en dos expediciones

efectuadas en los veranos de 1981 y 1983.

Se incluyen descripciones breves, datos

sobre habitats y rangos altitudinales de-

terminados a base de registros tomados a

intervalos de 50 m de altura, para un total

de 281 especies. Se da a conocer nuevos lí-

mites norte de 15 especies y nuevos lími.-

tes sur de 5 especies. Se propone la nueva

combinación Gentianella gilliesii (Gilg)

Marticorena et Arroyo.

ABSTRACT

Short descriptions, habitat data and

altitudinal ranges based on records main-

tained at 50 m intervals of elevation in the

field are given for a total of 281 species of

plants collected in the high Andes of Chile

in the little-explored region between Co-

nay and Laguna Grande and Laguna Chi-

ca, interior of Vallenar, Huasco province,

III Region, Chile (1600-4300 m) (20*30”-

29%00"S and 69%45'- 70%15"W) during two

expeditions carried out over the sum.-

mers of 1981 and 1983.New northern lim-

its for Chile are given for 15 species and

new southern limits for 5 species. The

new combination Gentianella gilliesii

(Gilg) Marticorena et Arroyo is propo-

sed.

KEY WORDS: Flora of Chile, Phyto-

geography, Gentianella.

(1) Departamento de Ciencias Ecológicas, Facultad de Ciencias Básicas y Farmacéuticas, Universidad de Chile, Casilla 653, San-

tiago, CHILE.

(2) Departamento de Botánica, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de Concepción, Casilla 2407,

Concepción, CHILE.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

Kalin Arroyo et al.

INTRODUCCION

En los últimos años, la flora y vegeta-

ción de los Andes del Altiplano y de la zo-

na mediaterránea de Chile ha sido objeto

de varios estudios intensivos (Ricardi éz

Marticorena, 1964; Marticorena é Queza-

da, 1974; Arroyo et al., 1981; Villagrán et

al., 1981; Arroyo et al., 1982 a,b;

Villagrán et al., 1982). De acuerdo con

Simpson (1979), estas investigaciones

han mostrado que uno de los factores más

importantes responsables de la diferen-

ciación biogeográfica de las floras de es-

tas áreas ha sido el desarrollo del Desier-

to de Atacama en la costa occidental de

Sudamérica a partir del Terciario. Tal

vez, debido a la inaccesibilidad del área,

hasta la fecha, la biota de la zona de los

Andes comprendida entre los grados 22 y

30 L.S., que habría sido la más afectada

por la desertificación, no ha sido estu-

diada en detalle. Los antecedentes dispo-

nibles para la flora de los Andes corres-

pondientes de estas latitudes provienen,

en su mayoría, de las expediciones de

Philippi (1860) quien atravezó los Andes

entre las latitudes de Copiapó y Calama

en el último siglo y de Werdermann

(1930), quien recorrió la zona entre 1923 y

1926. Otra contribución importante es la

de Johnston (1929a) quien publicó una lis-

ta de plantas que él colectó en el verano

de 1926 en la alta cordillera de San Juan,

Argentina, atravesando desde el lado chi.-

leno por el Paso de Valeriano (29%28'S-

69%53"W) y volviendo por el Paso de San-

carrón (29%37'S- 6958"W); esta lista

incluye muchas especies que también

crecen en la región andina chilena adya-

cente. En el mismo año, Johnston (1929b)

describió varias especies nuevas para la

flora chilena colectadas en esa expedi-

ción.

Este trabajo constituye una contribu-

ción dentro de un programa de investiga-

ción destinado a determinar los efectos

de la desertificación en la evolución de la

flora y vegetación andina de Chile, y la

primera de una serie de estudios realiza-

dos en los Andes entre los 2830” y 2900'S.

En él se presentan descripciones breves,

datos ecológicos y rangos altitudinales

precisos para toda la flora, constituyendo

un total de 281 especies de plantas en-

contradas en la zona estudiada.

AREA DE ESTUDIO, ITINERARIO Y METODOS

La zona estudiada está situada en la

alta cordillera del interior de Vallenar,

entre Conay y las áreas de Laguna Gran-

de y Laguna Chica, provincia de Huasco,

III Región. La parte inferior del área re-

cibe ca. 150 mm de precipitación anuales

y la parte superior ca. 250 mm anuales

(Huber, 1975). En los veranos de 1981

(8-15 de febrero) y 1983 (12-30 de enero) se

realizaron dos expediciones que en con-

junto siguieron el siguiente trayecto: se

recorrió la cuenca del río Laguna Grande

partiendo desde la Junta de Valeriano

(ca. 1800 m), pasando por Las Papas (ca.

2000 m) y Potrero de Toledo (ca. 2400 m)

hasta llegar al desagúe de la Laguna

Grande (ca. 3100 m). Desde este punto

entramos en la cuenca de la Quebrada de

Cantarito, pasando por las confluencias

de la Quebrada Grande y de la Quebrada

Marancel (ca. 3500 m) y luego atravesa-

mos el Portezuelo de Cantarito (4106 m)

hasta pasar al límite superior de la vege-

tación (4300 m) en los faldeos SO del

Cerro de Cantaritos. El regreso se hizo

entrando por la Quebrada Vizcachas, pa-

sando el Portezuelo Vizcachas (ca. 4000

m»), Portezuelo de Zepeda (ca. 4100 m.) y

Portezuelo Laguna Chica (ca. 4200 m),

hasta llegar a Laguna Chica (3400 m).

Desde allí ascendimos directamente has-

ta el Portezuelo Yerba Buena (3950 m) y

seguimos la Quebrada Yerba Buena has-

ta su confluencia con el Río de Valeriano

(ca. 2200 m). El trayecto hasta la Junta

de Valeriano fue completado bajando por

el valle del Río de Valeriano. Explora-

ciones adicionales preliminares fueron

realizadas en las laderas del río Conay,

entre la Junta de Valeriano y la Quebra-

da Albaricoque (ca. 1600 m). A lo largo de

este trayecto se colectó la flora y se re-

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Fig. 1.- Zona de estudio, 111 Región, Chile. Los cuadros negros corresponden a las

localidades mencionadas en el texto

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

gistró su composición a intervalos de 50

m de altura, entre 1800 y 4300 m en la

cuenca de la Laguna Grande, y entre 2000

y 3950 m en la cuenca de la Laguna Chica.

El área de estudio y la ruta seguida se

muestran en la Fig. 1.

Localidades de colecta y números de

colección

Las plantas de la serie 81 fueron colec-

tadas por M.T. Kalin Arroyo; las de la se-

rie 83 por C. Marticorena, M.T. Kalin

Arroyo y C. Villagrán. Las localidades de

colección, coordenadas geográficas y

fechas de colección de los números seña-

lados en el texto son:

1.- Río Laguna Grande, entre la Junta

Nes Valeriano y .. Las Papas,

28%51'S/70%07"'W-2853'S/70*08'W(1800-

2000 m): 81663 (13-11-81); 83300-83337 (18-

1-83).

2.- Río Laguna Grande, entre Las Pa-

pas y Potrero de Toledo,

2853'S/70%08"W-28%47'S/70%02"W (2000-

2400 m): 81501-81512 (10-11-81); 83338A-

83373 (19-1-83).

3.- Río Laguna Grande, entre Potrero

de Toledo y Quebrada Candelilla,

28%47'S/70%02"W-28%45'S/69%57"W (2400-

2800 m): 81513-81547 (11-11-81); 81661-

81662 (13-11-81); 83374-83392 (20-1-83).

4.- Río Laguna Grande, entre Quebra-

da Candelilla y el extremo oeste de la La-

guna Grande, 28%45'S/69%57"W-28"44*S

/69%51'W (2800-3100 m) 81548-81551 (11-II-

81); 81653-81660 (13-11-81); 83393-83424

(21-1-83).

5.- Quebrada Cantarito, entre el extre-

mo oeste de la Laguna Grande y la

Quebrada Marancel,

2844'S/69*51"W-28%39'S/69%43"W (3100-

3500 m): 81552 (11-11-81); 83425-83451-B

(22-1-83).

6.- Quebrada Cantarito, entre Laguna

Grande y Quebrada Vizcachas,

Kalin Arroyo et al.

28"44'5/6950"W-28"38'S/69%45"W (3200-

3400 m): 81556-81569 (11-11-81); 81641-

81652 (12-11-81); 83519-83551 (25-1-83).

7.- Quebrada Cantarito, entre Quebra-

da Grande y Quebrada Marancel,

2841'S5/69*44'W-28%39'5/69%43"W (3370-

3500 m): 81639-81640 (12-11-81); 83495-

83497 (24-1-83).

8.- Quebrada Cantarito, entre Quebra-

da Marancel y Portezuelo de Cantarito,

28"39'S/6943"W-2837'S/69%44'W (3500-

4300 m): 81596-81638 (12-11-81); 83452-

83494 (23-1-83); 83498-83518 (24-1-83).

9.- Quebrada Vizcachas, entre

Quebrada Cantarito y Portezuelo Viz--

cachas, 28%41'S/69%45"W-2842'S/69%42'W

(3200-4000 mp): 81570-81595 (11-11-81);

83552-83583-B (26-1-83).

10.- Entre Laguna Chica y Portezuelo

Yerba Buena, 28%48'S/69%43"W-28"48'S/

6950”"W (3400-3950 m): 83584-83603 (27-I-

83).

11.- Quebrada Yerba Buena, entre Por-

tezuelo Yerba Buena y Río de Valeriano,

2848'S/69%50"W-28%51'S/69%57"W (3950-

2200 m): 83604-83617 (27-1-83).

12.- Río de Valeriano, entre Quebrada

Yerba Buena y la Junta de Valeriano,

28%51'S/6957"W-28%53'S/70%07"W (2200-

1800 m): 83618-83647 (28-1-83). a

13.- Río Conay, entre la Junta de Vale-

riano y Quebrada Albaricoque,

28%53'5/7007"W-28*56'S/70*15'W (1800-

1600 m): 81664-81695 (14-11-81); 83648-

83650 (29-1-83).

Las colecciones están depositadas en:

el herbario del Laboratorio de Sistemáti-

ca y Ecología Vegetal, Departamento de

Ciencias Ecológicas, Facultad de Cien-

cias Básicas y Farmacéuticas, Universi- -

dad de Chile, Santiago, y en el Herbario

de la Universidad de Concepción

(CONC).

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

Abreviaturas

RC: Río Conay, entre Quebrada Albari-

coque y la Junta de Valeriano.

LG: Cuenca de la Laguna Grande (Río

Laguna Grande, Laguna Grande,

Quebrada Cantarito, Quebrada Ma-

rancel, Portezuelo Cantarito, Cerro

de Cantaritos, Quebrada Vizcachas,

Portezuelo Vizcachas y Portezuelo de

Zepeda).

LC: Cuenca de la Laguna Chica (Laguna

Chica, Portezuelo Yerba Buena,

Quebrada Yerba Buena y Río de Vale-

riano).

RT: Rango altitudinal inferior y superior

de la especie en la zona de estudio.

Nota: Los rangos altitudinales exactos

son derivados de los registros de la

flora obtenidos a intervalos de 50 m de

altura en terreno. Los rangos dados

como aproximados son tomados de

las localidades de colecta.

PTERIDOPHYTA

EQUISETACEAE

Equisetum giganteum L., Sp. Pl., ed.

2 ioid 1763.

Hierba perenne, rizomatosa, de ca. 1

m de altura. Tallos huecos, ásperos,

estriados, articulados, con vainas en los

nudos. Ramas delgadas, dispuestas en

verticilos en la base de las vainas. Conos

elípticos, terminales en las ramitas. Lo-

calmente común a orillas de cursos de

agua. LG: 2250-2300 m; LC: 2050 m; RT:

2050-2300 m.

GYMNOSPERMAE

EPHEDRACEAE

Ephedra breana Phil., Anales Univ.

Chile 91: 519. 1895.

Arbusto grande o raramente pequeño

árbol dioico, de hasta 2.5 m de altura, con

múltiples tallos leñosos en las plantas

viejas. Hojas muy cortas, connadas, en-

vainadoras. Estróbilos sésiles, solitarios

Kalin Arroyo et al.

o en glomérulos en los nudos de las ra.

mas, los femeninos con las brácteas car-

nosas y rojas en la madurez; anteras 2-6;

semillas 2, raro 3. Común en laderas se-

cas y rocosas. LG: 1800-3650 m;'LC: 2000-

3600 m; RT: 1800-3650 m. N%s. 81550,

83321, 83331.

ANGIOSPERMAE:

DICOTYLEDONEAE

ANACARDIACEAE

Schinus polygamus (Cav.) Cabr. in

Frenguelli, Obra Centen. Mus. La Plata

2: 269. 1937.

Arbusto dioico de hasta 2.5 m de altu-

ra, con ramas glabras terminadas en es-

pina. Hojas alternas, semifasciculadas,

oblanceolado-estapuladas, sésiles o muy

cortamente pecioladas, enteras o con al-

gunos dientes, glabras. Flores blanco-

cremosas. Frecuente a orillas de los ríos.

LG: 1900-2250 m; LC: 2000-2750 m; RT:

1900-2750 m. N* 81549.

BIGNONIACEAE

Argylia checoensis (Meyen)

Johnst., J. Arnold Arbor. 19: 216. 1938.

Hierba perenne, peluda, de hasta 15

«cm de altura, con raíz gruesa de la que

nacen varios tallos prostrados; hojas de

contorno orbicular, palmatisectas, con

segmentos enteros hasta lobulados; flo-

res en racimos compuestos, amarillas

con garganta anaranjada; cápsula fusi-

forme. En laderas arenosas; poco fre-

cuente. LG: 1800 m; LC: 2050-2700 m;

RT: 1800-2700 m. N%s 81684, 83311, 83631.

Argylia potentillaefolia DC., Prodr.

9: 235. 1845.

Hierba perenne, rizomatosa,

glanduloso-pubescente, de ca. 80 cm de

altura. Tallos ascendentes. Hojas palma-

tisectas; folíolos lanceolado-oblongos,

dentados, verdes. Flores en racimos

simples, amarillas con garganta ligera-

mente rojiza. Frutos siliquiformes, col-

gantes. En laderas arenosas y taludes

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

inclinados, en asociación con Senna ur-

menetae (Phil.) Irw. et Barneby y Alstro-

emeria andina Phil. LG: 1800-2150 m;

LC: 2000-2100 m; RT: 1850-2150 m. N”

81679.

BORAGINACEAE

Cryptantha calycina (Phil.) Reiche,

Anales Univ. Chile 121: 825. 1907.

Hierba anual, híspida, erecta, de 10 a

20 cm de altura. Hojas lanceolado-

lineales. Flores diminutas, blanquecinas,

dispuestas en espigas geminadas o terna-

das, laxas. Nueces apenas tuberculadas o

lisas. Localmente común en el matorral

de Adesmia sentis Phil. LG: 3050-3450 m;

LC: 2200-3450 m; RT: 2200-3450 m. N's.

83557-B, 83585, 83593.

Cryptantha diffusa (Phil.) Johnst.,

Contr. Gray Herb. 78: 52. 1927.

Hierba anual, híspida, ramosa, de

hasta 15 cm de altura. Hojas lineales a

lanceolado-lineales. Flores muy pe-

queñas, blancas, en espigas solitarias o

geminadas. Nueces tuberculadas, arru-

gadas. Común en toda el área de estudio,

en terrenos poco inclinados. LG: 1800-

3600 m; LC: 2150-3500 m; RT: 1800-3600

m. Ns. 81503, 83348, 83362, 83379, 83445,

844) 7.

Cryptantha gnaphalioides (DC.)

Reiche, Anales Univ. Chile 121: 822. 1907.

Subarbusto híspido con pelos pátulos;

tallos erectos, de hasta 35 cm de altura.

Hojas sésiles, lanceolado-lineales, revo-

lutas. Flores blancas, en cincinios capitu-

liformes que se alargan en la madurez.

Crece localmente en taludes rocosos. LG:

2250-2800 m; LC: 2100-2650 m; RT: 2100-

2800 m. N“s. 81527, 81533, 83366, 83398,

83626.

Cryptantha involucrata (Phil.)

Reiche, Anales Univ. Chile 121: 830. 1907.

Hierba anual grácil, cortamente híspi-

da, de hasta 25 cm de altura. Hojas line-

Kalin Arroyo et al.

ales, sésiles. Flores blancas con centro

amarillo, dispuestas en espigas gemina-

das. Muy escasa en matorrales de Ades-

mia sentis Phil. Observada solamente en

la ladera E de la subida al Portezuelo de

Yerba Buena. LC: 3350 m. N* 83594.

Heliotropium chenopodiaceum

(DC.) Clos var. chenopodiaceum, in

Gay. Fl. Chil. 4: 458. 1849.

Arbusto glutinoso, barnizado, erecto,

de 35 cm de altura, glabro o algo pubérulo

en las inflorescencias. Hojas fascicula-

das, pequeñas, linear-lanceoladas, sési-

les, revolutas. Flores blancas, pequeñas,

sésiles, no bracteadas. Crece en laderas

rocosas. RC: ca. 1600-1800 m; LC: 2000-

2050 m; RT: ca. 1600-2050 m, N* 81667,

Pectocarya dimorpha (Johnst.)

Johnst., Contr. Gray Herb. 78: 115. 1927,

Hierba anual primaveral, tendida,

estrigosa, con pelos blancos recostados.

Hojas lineales. Flores cleistogamas en la

base de los tallos; flores casmógamas

blancas, muy pequeñas; nueces divarica-

das, con margen dentado y dientes termi-

nados en pelos uncinados. Común en ma-

torral de Senecio johnstonianus Cabr., $.

proteus Remy y Haplopappus baylahuen

Remy, cerca de la Junta de Valeriano.

LG: 1800 m.

BUDDLEJACEAE

Buddleja suaveolens Kunth et

Bouché, Ann. Sc, Nat. Bot., sér. 3, 5: 358.

1846.

Arbusto ceniciento-pubescente, intrin-

cado, de hasta 2 m de altura. Hojas pe-

queñas, sésiles, elípticas, enteras, densa-

mente pubescentes. Flores aromáticas,

anaranjadas, agrupadas en verticilos

densos formando una espiga interrumpi-

da. Muy abundante pero restringido a los

márgenes de los ríos. LG: 1800-2800 m;

LC: 2000-2900 m; RT: 1800-2900 m. N?*

81663.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

CACTACEAE

Eriosyce sp.

Cacto esférico, de 30 cm de diámetro,

ligeramente enterrado, con espinas ama-

rillentas. Crece entre rocas. Aparente-

mente muy escaso; un solo individuo es-

téril observado ca. 2km al NE del Potre-

ro de Toledo. LG: 2550 m.

Tephrocactus sp.

Cojines hemisféricos, de aproximada-

mente 50 cm de diámetro y 25 cm de altu-

ra; espinas acintadas algo onduladas.

Crece localmente en laderas de poca pen-

diente y en el valle. LG: 2100-3850 m. N”

81600.

Tephrocactus sp.

Cojines semejantes a los de la especie

anterior, pero las espinas rojizas, cortas,

no acintadas. Crece en el mismo habitat.

Es posible que ésta y la especie anterior

sean sólo formas de una misma especie.

LG: 2100-3850 m.

CAESALPINIACEAE

Hoffmanseggia glauca (Ort.) Eifert,

Sida 5(1): 43. 1972.

Hierba perenne rizomatosa, glauca,

pubescente y glandulosa. Hojas imparipi-

nadas, 2-6-yugas; folíolos 4-12-yugos. Flo-

res amarillo-anaranjadas, en racimos

multifloros; legumbres arqueadas. En

terreno arenoso alterado. LG: 1900-1950

m; LC: 2050-2300 m; RT: 1900-2300 m. N*%s

83617, 8364).

Senna urmenetae (Phil.) Irw. et

Barneby, Mem. New York Bot. Gard. 35:

318. 1982.

Arbusto con ramas péndulas, de hasta

40 cm de altura; folíolos coriáceos,

mucronados, verde-oscuros; flores ama-

rillas; legumbres tortuosas, colgantes.

En taludes arenosos. LG: 2050-2350 m;

LC: 2000-2650 m; RT: 2000-2650 m. N%s.

83310, 83648.

Kalin Arroyo et al.

CALYCERACEAE

Nastanthus caespitosus (Phil.)

Reiche var. caespitosus, Bot. Jahrb.

Syst. 29: 114, lám. 1, fig. 18. 1900.

Hierba perenne, suculenta, cespitosa,

glabra, con raíz gruesa, profunda, anilla-

da. Hojas arrosetadas, pinatifidas, con

lóbulos obtusos. Cabezuelas numerosas,

terminales sobre tallos huecos algo más

cortos que las hojas. Flores blancas.

Abundante en los bordes de las vegas al-

toandinas junto con Patosia clandestina

(Phil.) Buch., Oxychloe andina Phil. y

Scirpus atacamensis (Phil.) Boeck. LG:

3150-3800 m. N9s. 81623, 81641, 83/29.

CAMPANULACEAE

Cyphocarpus rigescens Miers, Lon-

don J. Bot. 7: 62. 1848.

Hierba anual de hasta 15 cm de altu-

ra; hojas rígidas, pinatisectas, con seg-

mentos espinudos; flores axilares, azules

hasta casi blancas; cápsula arqueada.

Localmente común en taludes arenosos

en el trayecto Junta de Valeriano-Potrero

de Toledo. LG: 1800-2000 m. N%s. 83313,

8334).

Hypsela reniformis (H.B.K.) K.

Presl, Prodr. Monogr. Lobel. 45. 1836.

Hierba perenne, pigmea, rizomatosa,

formando céspedes extensos; hojas

aovado-orbiculares, largamente peciola-

das; flores blanco-liliáceas. Común en las

vegas altoandinas asociada a Patosia

clandestina (Phil.) Buch., Oxychloe andi-

na Phil. y Scirpus atacamensis (Phil.)

Boeck. LG: 2800-3800 m. N'%s. 81514, 83416,

831432, 83546.

CARYOPHYLLACEAE

Arenaria rivularis Phil., Viage Des.

Atacama 184. 1860.

Hierba perenne pequeña, rizomatosa,

formando céspedes laxos; hojas tupidas,

oblongo-lineares; flores blancas. Común

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

en las vegas altoandinas. LG: 3200-3800

m. N%s. 83509, 83538.

Colobanthus quitensis (H.B.K.)

Bartl. in K. Presl, Rel. Haenk. 2: 13, lám.

49, fig. 2. 1831.

Hierba perenne enana, formando pe-

queños céspedes compactos, de hasta 4

cm de altura; hojas arrosetadas, line-

ales, agudas; flores verdes, sobre pedún-

culos alargados. Común en las vegas alto-

andinas. LG: 2800-3800 m. Ns. 81643,

83430, 83494, 83525.

Spergularia pissisii (Phil.) Johnst.,

Revista Chilena Hist. Nat. 33: 26. 1929.

Hierba perenne, densamente glandu-

losa, formando céspedes laxos; hojas fas-

ciculadas, carnosas, mucronadas; estí-

pulas plateadas; flores blancas, solita-

rias o en inflorescencias bifloras. Crece

preferentemente apegada a piedras en

áreas de acumulación de agua de

deshielo; común. LG: 3450-3950 m. N%s.

81635, 83463, 83496, 8357).

Stellaria stenopetala Phil., Linnaea

33: 20. 1864.

Hierba perenne pigmea, glabra, rizo-

matosa; hojas pequeñas, oblongo-

lineales; flores axilares, blancas. Crece

entremezclada con los otros componentes

de las vegas altoandinas de la Quebrada

de Cantarito y Quebrada Vizcachas; es-

casa. LG: 3400-3800 m. N%s. 83434, 83510,

83537, 83579.

CHENOPODIACEAE

Atriplex imbricata (Moq.) A. Dietr.,

SynmiB1 O: 036. 1892:

Arbusto blanquizco con ramas erec-

tas, de hasta 75 cm de altura; hojas pe-

queñas, acorazonadas, tupidas. Escaso;

en terrenos alterados en la Quebrada

Yerba Buena y curso inferior del Río de

Valeriano. LC: 2000-2550 m. N” 83620.

Atriplex madariagae Phil., Anales

Mus. Nac. Chile, Secc. 2, 8: 73. 1891.

Kalin Arroyo et al.

Arbusto dioico, robusto, ceniciento, de

1-1.50 m de altura, las plantas más

viejas con tallos muy gruesos, leñosos,

con corteza descascarada; hojas cres-

pas, glaucas. Crece en la vecindad de

quebradas intermitentes; escaso. LG:

ca. 2400-2800 m; LC: 2100-2500 m; RT: ca.

2100-2800 m. Ns. 81532, 83625.

Atriplex coreophila Phil., Anales

Univ. Chile 91: 427. 1895.

Hierba prostrada, cenicienta, pro-

bablemente anual, con raíz algo leñosa;

hojas pequeñas, aovado-triangulares;

flores en glomérulos. Crece en terreno

arenoso alterado, cerca de Quebrada

Candelilla; rara. LG: 2850 m. N” 83/1/-4.

Chenopodium ambrosioides L., Sp.

Pl 21951753:

Hierba perenne, erecta, aromática.

Localmente frecuente en terrenos húme-

dos alterados. LG: 2050-2800 m; LC: 2050

m; RT: 2050-2800 m.

Chenopodium frigidum Phil., Viage

Des. Atacama 221. 1860.

Hierba anual tendida, glauca, con

tallos rojizos. Crece preferentemente en

suelos arenosos húmedos. LG: 3150-3850

m; LC: 2700-3350 m; RT: 2700-3850 m.

Ns. 81583, 81589, 83598.

Chenopodium murale L., Sp. Pl. 219.

1703:

Hierba anual, erecta, de hasta 30 cm

de altura; hojas aovado-rómbeas. Male-

za introducida de Europa; escasa en

terrenos alterados. LG: 2100-2200 m; LC*

2000-2150 m; RT: 2000-2200 m.

Chenopodium sp.

Hierba anual, con tallos farinosos, ten-

didos, rojizos. Abundante en suelos are-

nosos alterados. LG: 2350-2850 m; LC:

2500 m; RT: 2350-2850 m. Ns. 81520,

83369.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

COMPOSITAE

Baccharis cf. incarum Wedd., Chlo-

ris And. 1: 170, lám. 29. 1856.

Arbusto dioico, compacto, glutinoso,

de hasta 80 cm de altura; tallos ama-

rillentos; cabezuelas aglomeradas en “el

extremo de las ramas; pappus blanco. Se

observó sólo en las laderas adyacentes a

la Quebrada de Cantarito. LG: 3300-3450

m. N9s. 81566, 83441.

Baccharis linearis (R. et P.) Pers.,

Syn. Pl. 2: 425. 1807.

Arbusto glutinoso, erecto, de hasta

1.25 m de altura; hojas lineales; cabe-

zuelas con pappus blanco. Localmente

común en la orilla de los ríos. LG: 2300

m; LC: 2050-2100 m; RT: 2050-2300 m. N?

83633.

Baccharis sagittalis (Less.) DC.,

Prodr. 5: 425. 1836.

Subarbusto dioico, glabro, con tallos :

trialados poco hojosos; hojas oblongo-

aovadas, enteras; capítulos en espigas

terminales cortas, interrumpidas. Sola-

mente se observó al borde del Río Laguna

Grande, cerca de Las Papas; escaso.

LG: ca. 2000-2250 m.

(R.

Baccharis salicifolia et P.)

Pers., Syn. Pl. 2: 425. 1807.

Arbusto dioico, ramoso, resinoso, de

hasta 2 m de altura; hojas lanceoladas a

linear-lanceoladas, aserradas, trinerva-

das; capítulos numerosos, dispuestos en

cimas corimbiformes. Una de las espe-

cies más abundantes a lo largo de los

ríos. LG: 1800-2850 m; LC: 2000-2700 m;

RT: 1800-2850 m. N*%s 81534, 83320, 83364.

Centaurea cachinalensis Phil.,

Viage Des. Atacama 208. 1860.

Hierba perenne, robusta, áspera, cor-

tamente hirsuta y glandulosa, flocosa en

las partes nuevas, de hasta 75 cm de altu-

ra. Tallos ascendentes, estriados. Hojas

10

Kalin Arroyo et al.

pectinadas, con los segmentos distantes,

enteros. Cabezuelas rosadas, vistosas.

Crece preferentemente en taludes roco-

sos y arenosos, entre Potrero de Toledo y

Quebrada Candelilla y en Quebrada Yer-

ba Buena. LG: 2450-2800 m; LC: 2750-3200

m; RT: 2450-3200 m. NOs. 81521, 83377.

Centaurea melitensis L., Sp. Pl. 917.

ISS

Hierba anual áspera, de 25 cm de altu-

ra, con flores amarillas y brácteas invo-

lucrales espinosas. Maleza naturalizada

vista únicamente cerca de la Junta de

Valeriano. LG: 1800 m.

Chaetanthera acerosa (Remy) B. et

H. ex Griseb. var. acerosa, Abh. Kónigl.

Ges. Wiss. Góttingen 24(1): 214. 1879.

Hierba perenne, cenicienta, de ca. 5

cm de altura; hojas lanceolado-lineales,

apretadas en la base de los capítulos; lí-

gulas blancas. Común en suelos ripiosos.

LG: 2500-3950 m; LC: 3350-3750 m; RT:

2500-3950 m. Ns. 81504, 81572, 81615,

83151-B, 83471, 83588-B, 83591.

Chaetanthera lanata (Phil.) Johnst.,

Physis (Buenos Aires) 9(34): 325. 1929.

Hierba perenne, lanosa, con hojas es-

patuladas; matas compuestas de nume-

rosas rosetas tendidas. Cabezuelas gran-

des; flores del radio normalmente blan-

cas, ocasionalmente amarillas; flores del

disco con las anteras rojo-oscuras. Abun-

dante en suelos arenosos y en ripios finos.

LG: 2500-3550 m;”"LC: 3000-3200 m; RT:

2500-3550 m. N9s. 81560, 83419, 83615.

Nota: Plantas menores, con cabe-

zuelas más pequeñas y anteras ama-

rillas, que crecen cerca del límite supe-

rior de la vegetación posiblemente deban

referirse a una nueva especie. LG: 3800-

4000 m; LC: 3650-3700 m; RT: 3650-4000

m. N9s. 81612, 83473, 83576, 83590.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

Chaetanthera leptocephala Cabr.,

Notas Mus. La Plata, Bot. 17: 78, fig. 4.

1954.

Hierba anual, "glabra, primaveral,

grácil, con los tallos filiformes, erectos;

cabezuelas angostas; lígulas cortas,

blancas. Crece en el matorral de Senecio

johnstonianus Cabr. Constituye un nuevo

límite norte para esta especie. LG: 1800-

2400 m; LC: 2700 m; RT: 1800-2700 m. Ns,

81502, 83356.

Chaetanthera limbata (D. Don)

Less., Syn. Gen. Compos. 116. 1832.

Hierba perenne, glauca, casi glabra,

con pelos lanosos en la base de las cabe-

zuelas; matas con tallos solitarios o múl-

tiples, tendidos. Cabezuelas grandes; lí-

gulas amarillo-doradas. Crece en el ma-

torral de Haplopappus baylahuen Remy

y Senecio johnstonianus Cabr. LG: 1800-

2450 m; LC: 2050-2700 m; RT: 1800-2700

m. N9s. 81525, 83355.

Chaetanthera minuta (Phil.) Cabr.,

Revista Mus. La Plata, Secc. Bot. 1: 134,

fig. 19. 1937.

Hierba anual pequeña, decumbente,

envuelta en lana blanca; cabezuelas pe-

queñas; lígulas blancas. Forma colonias=

en suelos arenosos. Común en Quebrada

de Cantarito. LG: 3150-3850 m. N”s. 81573,

81625, 83449.

Chaetanthera pulvinata (Phil.)

Hauman var. pulvinata, Physis (Buenos

Aires) 3: 420. 1917.

Hierba perenne, arrosetada, laxamen.-

te cubierta con pelos lanosos; lígulas

blancas. Crece cerca del límite superior

de la vegetación, en taludes pedregosos.

Observada solamente en los faldeos del

Cerro de Cantaritos. LG: 3900-4150 m.

Ns. 81611, 83501.

Chaetanthera sphaeroidalis

(Reiche) Hicken, Darwiniana 1: 41. 1922.

Pequeña hierba perenne con raíz fili-

forme, compuesta de agrupaciones de ro-

Kalin Arroyo et al.

11

setas esféricas, apretadas, densamente

lanosas, de color rosado. Capítulos sési.-

les, inmersos entre las hojas superiores;

lígulas blancas. Crece entre rocas en ta-

ludes pendientes en el límite superior de

la vegetación altoandina en los faldeos

del Cerro de Cantaritos, junto con la espe-

cie anterior. LG: 3900-4150 m. N's. 81610,

83467, 834,98.

Chuquiraga acicularis D. Don, Phi-

los. Mag. Ann. Chem. 11: 392. 1832.

Arbusto verde ceniciento, con ramas

estrictas y hojas punzantes, de hasta 40

cm de alto. Cabezuelas amarillo-doradas.

Escaso en matorral de Senecio johnsto-

nianus Cabr. y en el matorral desértico.

RC: ca. 1600-1800 m; LG: 1800 m; LC:

2000-2200 m; RT: ca. 1600-2200 m. N's.

81686, 83310, 83630, 83635.

Conyza bonariensis (L.) Crona.,

aff., Bull. Torrey Bot. Club 70: 632. 1943.

Hierba probablemente anual, de ca. 20

cm de altura, con tallos erectos pubes-

centes y hojas lineales; cabezuelas con

pappus blanco sucio. Maleza de lugares

húmedos alterados. RC: ca. 1600-1800 m.

N”* 81690. >

Doniophyton anomalum (D. Don)

Kurtz, Bol. Acad. Nac. Ci. 13: 187. 1893.

Hierba anual, verde cenicienta, de

hasta 15 cm de altura, compuesta de rx2-

merosos tallos ascendentes. Capítulos an-

gostos, anaranjados. Localmente abun-

dante en suelos arenosos y taludes pedre-

gosos. LG: 3100-3850 m; LC: 3400-3500 m;

RT: 3100-3850 m. Ns. 81576, 83461, 83561.

Encelia canescens Lam., Encycl. 2:

356. 1786.

Subarbusto con tallos erectos, de has-

ta 40 cm de altura; hojas cortamente pu-

bescentes. Capítulos solitarios; lígulas

amarillas; flores del disco con anteras

negras. Escaso; en taludes arenosos en el

cajón del Río Conay. RC: ca. 1600-1800 m.

N* 81694.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

Erigeron leptopetalus Phil., Linnaea

33: 136. 1864.

Hierba perenne, peluda, formando

frecuentemente cojines laxos de hasta 15

cm de diámetro. Lígulas blancas con los

extremos rosados. Una especie común en

las vegas altoandinas, especialmente en

los bordes de ellas. LG: 2850-3700 m. N's.

81628, 83/28, 83439, 83511.

Gnapalium cf. coquimbense Phil.,

Linnaea 29: 5. 1858.

Hierba pequeña, perenne, grisácea,

tendida; cabezuelas con las brácteas pa-

jizas. En terreno húmedo arenoso; esca-

sa. LG: 2600 m; LC: 2850-2900 m; RT:

2600-2900 m. N* 83413.

Gutierrezia neaeana (DC.) Blake,

Contr. U.S. Natl. Herb. 26: 231. 1930.

Arbusto glutinoso, barnizado, de color

verde claro, con muchas ramas erectas,

de hasta 50 cm de altura. Cabezuelas pe-

queñas, amarillas. Rara, en matorral de

Haplopappus baylahuen Remy; se en-

contró solamente en la parte inferior de

la Quebrada Yerba Buena. LC: 2650-3250

m. N* 83606.

Haplopappus baylahuen Remy in

Gay, Fl. Chil. 4: 42. 1849.

Arbusto glutinoso, barnizado, con ra-

mas erectas amarillas, de hasta 65 cm de

altura; hojas coriáceas, onduladas, ver-

de claro; cabezuelas terminales, gran-

des, amarillas. Especie dominante en el

matorral subandino. LG: 1800-3600 m;

LC: 2400-3550 m; RT: 1800-3600 m. Ns.

81552, 83335, 8331 1-A, 83600.

Haplopappus linifolius (Phil.)

Reiche, Anales Univ. Chile 109: 36. 1901.

Arbusto erecto, pegajoso, de hasta 60

cm de altura; hojas lineales, cortamente

dentadas; cabezuelas amarillas. Crece

mezclada con Haplopappus baylahuen

Remy. LG: 2200-2750 m; LC: 2350-2500 m;

RT: 2200-2750 m. N9s. 81671, 83392.

Kalin Arroyo et al.

12

Haplopappus baylahuen x linifolius (?)

Se observaron varios individuos con

caracteres intermedios entre H.

baylahuen Remy y H. linifolius (Phil.)

Reiche, que sospechamos que sean híbri-

dos. En los caracteres se acercan más a

H. linifolius, principalmente por las hojas

más angostas y menos dentadas. RC: ca.

1600-1800 m; LG: 2200-2750 m; RT: ca.

1600-2750 m. N*s.81670, 83365, 83391.

Haplopappus sp.

Arbusto de aproximadamente 60 cm

de altura, con ramas erectas, glanduloso

pegajoso; hojas sésiles aovadas, tiesas,

irregularmente dentadas; dientes recur-

vos, mucronados; capítulos axilares dis-

puestos en racimos terminales; flores

isomorfas. Visto solamente en laderas ro-

cosas ca. 5km al SO de la Junta de Vale-

riano. RC: ca. 1700 m. N” 81665.

Haplopappus sp.

Arbusto de aproximadamente 45 cm

de altura, glutinoso, erecto, ramoso des-

de la base, densamente folioso; hojas pe-

queñas pinatisectas, con raquis y seg-

mentos lineales. Capítulos radiados; lígu-

las amarillas. En laderas rocosas en las

vecindades de la Junta de Valeriano. LG:

1800 m; LC: 2000 m; RT: 1800-2000 m. N?

83643.

Hinterhubera scoparia (Phil.)

Cabr., Notas Mus. La Plata, Bot. 17: 65.

1954.

Arbusto muy ramoso, de ca. 80 cm de

altura, con ramas verdes delgadas, fle-

xuosas, casi áfilo por las hojas temprana-

mente deciduas. Cabezuelas agrupadas

hacia el extremo de los tallos; involucro

verde. Crece en laderas secas; muy lo-

cal. LG: 2050-2800 m; LC: 2200-2250 m;

RT: 2050-2800 m. Ns. 81523, 83339, 83360.

Leucheria runcinata D. Don, Philos.

Mag. Ann. Chem. 11: 389. 1832.

Hierba perenne, de ca. 40 cm de altu-

ra, ramosa, pegajosa; hojas profunda-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

mente lobulado-dentadas. Lígulas blan-

cas hasta azulinas. Crece en laderas ro-

cosas entre Quebrada Candelilla y Lagu-

na Grande; escasa. LG: 2800-3100 m. Ns.

81539, 81551, 83401, 83422.

Leucheria salina (Remy) Hieron.,

Bol. Acad. Nac. Ci. 4: 50. 1881.

Hierba perenne, fétida, rizomatosa,

de ca. 10 cm de altura; hojas pinatisec-

tas, peladas, verde oscuras. Capítulos

terminales con lígulas blancas y anteras

violáceas. Crece en la zona nival entre

piedras, en el Portezuelo de Cantarito.

LG: 3800-4000 m. N's. 81614, 83/60.

Madia sativa Mol., Sag. Stor. Nat.

Chili 136. 1782.

Hierba anual, de ca. 30 cm de altura,

glandulosa, con tallos simples; hojas in-

feriores arrosetadas. Cabezuelas varias,

radiadas; lígulas amarillas. Observada

sólo en la cuenca del Río Conay, en terre-

nos alterados. RC: ca. 1600-1800 m. N”

81689.

Mutisia cana Poepp. ex P. et. E., No-

va Gen. Sp. Pl. 1: 17. 1835.

Arbusto voluble con ramas flexuosas;

hojas ovadas, coriáceas, prolongadas en

zarcillo, fuertemente dentadas; dientes

espinosos. Cabezuelas solitarias, con lí-

gulas rojo-intensas. En laderas pedrego-

sas inclinadas, cerca de la Junta de Vale-

riano; enredada en los arbustos. LG: ca.

1800-2000 m. N”* 83300.

Mutisia sinuata Cav., Icon. 5: 66,

lám. 495. 1799.

Arbusto voluble con tallos flexuosos,

cortamente alados; hojas angostamente

lanceoladas, dentadas, a veces termina-

das en zarcillo. Capítulos con lígulas cre-

mosas hasta rojizas. Crece en el matorral

junto con Haplopappus baylahuen Remy

y Viviania marifolia Cav.; es una planta

escasa en la zona. LG: 3150-3200 m; LC:

3250 m; RT: 3150-3250 m. Ns. 81509,

836005.

Kalin Arroyo et al.

13

Ophryosporus paradoxus (H. et A.)

B. et H. ex B.L. Rob., Proc. Amer. Acad.

Arts 42: 18. 1906.

Arbusto de ca. 80 cm de altura, muy

ramoso desde la base, densamente fo-

lioso; hojas lineales, fasciculadas. Cabe-

zuelas pequeñas, blanco-amarillentas, en

panículas terminales. Crece localmente

con Haplopappus baylahuen Remy y aso-

ciados. LG: 1800-1850 m; LC: 2050 m;

RT: 1800-2050 m. N* 83308.

Pachylaena atriplicifolia D. Don ex

H. et A., Companion Bot. Mag. 1: 106.

1835.

Hierba perenne arrosetada; rosetas

de hasta 15 cm de diámetro; hojas

gruesas, casi circulares, pecioladas, den-

ticuladas, glauco-rojizas, amontonadas

en el extremo de los tallos. Capítulos sési.-

les, grandes, uno por roseta; lígulas

crema-rojizas a amarillo-claras. Crece

preferentemente en taludes ripiosos, fre-

cuentemente con Viola frigida Phil., Ca-

landrinia picta Gill. ex Arn. y Oreopolus

macranthus (Phil.) Ricardi. LG: 3350-

3800 m; LC: 3350-3750 m; RT: 3350-3800

m. N%s. 81585, 81633, 83426, 83475, 83521,

83567.

Perezia atacamensis (Phil.) Reiche,

Anales Univ. Chile 116: 425. 1905.

Hierba perenne, erecta, rizomatosa,

de hasta 30 cm de altura; hojas inferiores

arrosetadas, lobuladas, denticuladas,

verde-oscuras. Cabezuelas solitarias o en

racimos; lígulas azules a lilacinas. Crece

generalmente entre piedras; observada

solamente cerca del Portezuelo de Canta-

rito. LG: 3650-3900 m; N*s. 81581, 81626,

83454.

Polyachyrus carduoides Phil.,

Viage Des. Atacama 202. 1860.

Subarbusto erecto, de hasta 55 cm de

altura, con raíz leñosa profunda; tallos

densamente hojosos; hojas abrazadoras,

pinatisectas con segmentos espinulosos,

densamente pubescente-glandulosas. Ca-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

pítulos pequeños, bifloros, reunidos en

glomérulos; pelos del vilano plumosos;

flores blancas. Crece entre piedras en el

matorral de Haplopappus baylahuen

Remy. LG: 1800-2750 m; LC: 2100-2350 m;

RT: 1800-2750 m. Ns. 81695, 83376.

Proustia ilicifolia H. et A. fma. ilici-

folia, Bot. Beechey Voy. 28. 1830.

Arbusto o pequeño árbol de hasta 2.5

im de altura; hojas coriáceas, lanceola-

das, irregularmente dentadas; dientes

espinosos. capítulos agrupados en paní-

culas terminales piramidales densas; flo-

res blancas, perfumadas. Crece en lade-

ras rocosas muy pendientes. RC: ca.

1600-1800 m; LC: 2000 m; RT: ca. 1600-

2000 m. Ns. 81680, 83650.

Senecio breviscapus DC. ?, Prodr.

6: 418. 1838.

Hemos referido tentativamente a esta

especie un solo individuo estéril en-

contrado en una vega altoandina en la

Quebrada de Cantarito, especialmente

por la morfología de las hojas y raíces.

LG: 3350 m. N* 83444-B.

Senecio jóhnstonianus Cabr. Lilloa

15: 398, fig. 146. 1949.

Arbusto ramoso, de hasta 75 cm de al-

tura, densamente cubierto por pubescen-

cia glandular corta. Hojas subcoriáceas,

profundamente pinatisectas, con seg-

mentos lineales. Capítulos radiados, dis-

puestos en corimbos; língulas amarillas.

Una de las especies más comunes en el

matorral entre 1800 y 3000 m. LG: 1800-

3150 m; LC: 2000-2500 m;, RT: 1800-3150

m. N's. 81517, 81546, 83381.

Senecio luridus Phil., Viage Des.

Atacama 207. 1860.

Arbusto pequeño, de aproximadamen.

te 30 cm “de altura, densamente

glanduloso-pubescente. Hojas auricula-

das, pinatisectas, no coriáceas. Capítulos

radiados, en corimbos; língulas ama-

llas, pequeñas. Se observó sólo una

Kalin Arroyo et al.

14

planta de esta especie, al SO de la

Quebrada Candelilla. LG: 2650 m.

Senecio microtis Phil., Anales Univ.

Chile 88: 253. 1894.

Arbusto pequeño, de hasta 40 cm de al-

tura, densamente recubierto por pelos

glandulosos cortos; hojas profundamente

bipinatisectas, los segmentos gruesos y

algo suculentos. Cabezuelas radiadas,

dispuestas en cimas; lígulas amarillas.

Localmente común en suelos arenosos.

LG: 2750-2800 m; LC: 2400 m; RT: 2400-

2800 m. N“s. 81531, 83383.

Senecio oreinus Cabr., Notas Pre-

lim. Mus. La Plata 3: 119. 1934.

Subarbusto resinoso, de hasta 30 cm

de altura; hojas distantes, profundamen-

te pinatisectas. Cabezuelas dispuestas en

cimas laxas; flores isomorfas, amarillas.

Especie encontrada una sola vez cerca de

la Quebrada Candelilla. Nuevo límite

norte para la especie. LG: 2800 m. N”

81537.

Senecio oreophyton Remy in Gay,

Fl. Chil. 4: 158. 1849.

Arbusto de hasta 50 cm de altura, féti-

do, glabro, con ramas algo tortuosas. Ho-

jas pinatisectas, carnosas. Capítulos dis-

coideos o cortamente radiados, dispues-

tos en cimas corimbiformes laxas; flores

amarillas. Crece en el matorral de Ades-

mia sentis Phil. LG: ca. 3100-4000 m; LC:

ca. 3350 m; RT: ca. 3100-4000 m. Ns.

81569, 81595, 83440, 83553.

Senecio proteus Remy in Gay, Fl.

Chil. 4: 140. 1849.

Arbusto con múltiples tallos erectos

amarillentos, de hasta 75 cm de altura;

hojas oblanceolado-lineales, distantes,

algo lanosas cuando jóvenes, luego

glabras, enteras o con un par de lóbulos

(var. geissei (Phil.) Cabr.). Capítulos

discoídeos, en cimas corimbiformes; flo-

res amarillas. Uno de los arbustos más

comunes en el matorral subandino de

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

ambas cuencas. LG: 1800-2800 m; LC:

2000-2900 m; RT: 1800-2900 m. N%s. 81513,

81658, 83322.

Senecio santelicis Phil., Anales

Mus. Nac. Chile, Secc. 2, 8: 45. 1891.

Subarbusto glabro, fétido, ramoso,

erecto, de hasta 30 cm de altura. Tallos

verdes, densamente hojosos; hojas algo

carnosas, profunda e irregularmente

dentadas; dientes agudos. Capítulos en

cimas corimbiformes, cortamente ligula-

dos; flores amarillas. Crece en lugares

abiertos, arenosos. LG: 2900-3600 m. N”

83397.

Senecio segethii Phil. ?, Linnaea 33:

156. 1864.

Por el hábito y morfología de las hojas

hemos referido a esta especie material

estéril proveniente de la zona nival de

Cerro de Cantaritos. LG: ca. 4200 m. N*

81607.

Senecio tinctolobus Johnst., Contr.

Gray Herb. 85: 170. 1929.

Subarbusto pigmeo, lanoso, con varios

tallos ascendentes, de hasta 8 cm de altu-

ra. Hojas sésiles, oblanceoladas, con al-

gunos dientes hacia el extremo. Capítulos

isomorfos, solitarios en el extremo de las

ramas; lóbulos de la corola de color rojo-

vinoso. Crece en la zona nival en lugares

de deshielo tardío. LG: 3600-3900 m; LC:

3650 m; RT: 3600-3900 m. Ns. 81605,

83570.

Senecio volckmannii Phil., Linnaea

33: 152. 1864. ”

Subarbusto bajo, ramoso, de aproxi-

madamente 15 cm de altura, con hojas y

tallos densamente recubiertos con lana

amarilla; hojas lanceoladas, enteras. Ca-

pítulos isomorfos, solitarios; flores ama-

rillas con el extremo algo rojizo. En talu-

des pedregosos. LG: 3550-4000 m; LC:

3650 m; RT: 3550-4000 m. Ns. 81594,

8160), 81621, 83454, 83552. Í

15

Kalin Arroyo et al.

Sonchus asper (L.) J. Hill, Herb.

Brit. 1: 47. 1769.

Maleza encontrada en terreno altera-

do cerca de Potrero de Toledo. LG: 2300

m.

Sonchus oleraceus L., Sp. Pl, 794.

DOS

Maleza ocasional encontrada en terre-

nos alterados, cerca de Las Papas y

orillas del Río de Valeriano. LG: 2050 m;

LC: 2700 m; RT: 2050-2700 m.

Tagetes multiflora H.B.K., Nova

Gen. Sp. 4: 197. 1820.

Hierba anual, primaveral, grácil, de

hasta 12 cm de altura; hojas profunda-

mente pinatisectas, con segmentos line-

ales. Involucro café-rojizo; brácteas uni-

das, con bolsas oleíferas en el dorso; lígu-

las amarillas. Vista solamente cerca de

la Junta de Valeriano. Nuevo record sur

para la especie en Chile. LG: 1800 m.

Taraxacum officinale Weber in Wig-

gers, Primit. Fl. Holsat. 56. 1780.

Maleza cosmopolita; ampliamente

distribuida a lo largo del Río Laguna

Grande, en lugares húmedos. LG: 2300-

3200 m.

Tessaria absinthioides (H. et A.)

DC., Prodr. 5: (51836:

Arbusto de hasta 1.5 m de altura, con

muchos tallos erectos y hojosos desde un

rizoma, tomentoso. Hojas oblanceoladas,

dentadas. Capítulos en cimas corimbifor-

mes compactas; pappus rosado-violáceo.

Común alo largo de los ríos y en terrenos

húmedos alterados o salinos. LG: 1800-

2600 m; LC: 1800-2100 m; RT: 1800-2600

m.

Viguiera gayana (Phil.) Cabr. ex Es-

pinosa, Revista Chilena Hist. Nat. 42: 330.

1938.

Hierba perenne robusta, áspera, de

hasta 75 cm de altura; hojas lanceolado-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

ovadas, acuminadas, trinervadas; cabe-

zuelas grandes, terminales, largamente

pedunculadas; receptáculo paleáceo; lí-

gulas de color amarillo intenso. Observa-

da en una sola ocasión cerca de la Junta

de Valeriano. LG: ca. 1800 m.

Werneria pinnatifida Remy in Gay,

Fl. Chil. 4: 216. 1849.

Hierba perenne, rizomatosa, arroseta-

da, de aproximadamente 10 cm de

diámetro. Hojas amontonadas, carnosas,

pinatisectas. Cabezuelas solitarias, sési-

les, isomorfas; flores blancas con pappus

violáceo. Crece en las vegas altoandinas

en cojines de ciperáceas y juncáceas.

LG: 3400-3800 m. N%s. 81651, 83/83, 83507.

Werneria pygmaea Gill. ex H. et A.,

J. Bot. (Hooker) 3: 348. 1841.

Hierba perenne, enana, con rizoma

horizontal rastrero. Hojas arrosetadas,

lineales, enteras, glabras, excepto en la

vaina que es lanosa y violácea. Cabe-

zuelas solitarias, subsésiles; involucro

violáceo; lígulas blancas. Frecuente en

las vegas altoandinas. LG: 2800-3500 m.

Ns. 81511, 83415, 83524, 83532.

Xanthium spinosum L., Sp. Pl. 987.

1753.

Maleza anual introducida, con espinas

amarillas trífidas en la base de las hojas;

involucro cubierto de espinas ganchudas.

Observada sólo una vez cerca de la Junta

de Valeriano. LG: 1950 m.

CONVOLVULACEAE

Convolvulus arvensis L., Sp. Pl. 153.

OO:

Maleza enredadera con flores rosado-

pálidas y hojas hastadas. Localmente co-

mún en terrenos húmedos arenosos alte-

rados, cerca de la Junta de Valeriano.

LG: 1800-2100 m.

CRUCIFERAE

Cardamine glacialis (G. Forster)

DC., Syst. Nat. 2: 264. 1821.

Hierba perenne, de hasta 15 em de al-

tura, enteramente glabra; hojas pinadas,

Kalin Arroyo et al.

con el segmento terminal más ancho,

verde-oscuras. Flores en racimos, blan-

cas. Crece exclusivamente en los bordes

de los cursos de aguas en las vegas alto-

andinas. LG: 3150-3500 m.

Descurainia pimpinellifolia (Barn.)

O.E. Schulz, Pflanzenr. 86: 333. 1924.

Hierba anual de hasta 55 em de altura,

con numerosos tallos erectos canescen-

tes; hojas profundamente bipinatífidas'

cubiertas por pelos estrellados; flores pe-

queñas, amarillas; frutos pátulos. Muy

común en suelos arenosos y en áreas alte-

radas. LG: 1850-3400 m; LC: 2950-3250 m;

RT: 1850-3400 m. Ns. 81561, 833/9.

Descurainia stricta (Phil.) Prantl ex

Reiche, Anales Univ. Chile 90: 147. 1895.

Hierba anual, de hasta 25 cm de altu-

ra, con pubescencia estrellada. Hojas pi-

natifidas; flores amarillas pequeñas;

frutos adpresos al raquis. Crece en los

mismos hábitats que la especie anterior.

LG: 2900-3750 m; LC: 3300-3450 m; RT:

2900-3750 m. NOs. 81565, 83444-A, 83446.

Hymenolobus procumbens (L.)

Nutt. ex Torr. et Gray, Fl. N. Amer. 1:

117. 1838.

Hierba anual, pequeña, decumbente,

glabra. Flores blancas. Crece en los bor-

des de las vegas, en terreno alterado, en

el curso inferior de la Quebrada de Canta-

rito. LG: 3400-3500 m. N* 83540.

Lepidium sp.

Hierba perenne prostrada, con nume-

rosas ramas tendidas; rosetas de 15 cm

de diámetro; raíz gruesa, leñosa; hojas

desconocidas; frutos muy numerosos. En

terreno modificado; escasa. LG: ca. 3100-

3500 m. N* 83448.

Lepidium sp.

Hierba anual (?), con pocos tallos; ho-

jas dentadas, algo carnosas; inflorescen-

cias racemosas, alargadas. En el ma-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

torral con Haplopappus baylahuen

Remy. LG: 1800-2550 m; LC: 2100 m; RT:

1800-2550 m. N” 83389.

Menonvillea cuneata (Gill. et Hook.)

Rollins, Contr. Gray Herb. 177: 17. 1955.

Hierba perenne, de hasta 20 cm de al-

tura, densamente velutina, con varios

tallos ascendentes, morados hacia la ba-

se. Hojas tridentadas, plomizas, densa-

mente pubescentes. Flores cremas; sili-

culas orbiculares, aladas, rosado-

purpúreas. Crece entre las rocas, prefe-

rentemente en la zona nival. LG: 3450-

3900 m; LC: 3350-3750 m; RT: 3350-3900

m. Ns. 81618, 81630, 83153, 83560.

Menonvillea orbiculata Phil., Viage

Des. Atacama 183. 1860.

Hierba perenne con raíz leñosa, de

hasta 20 cm de altura; tallos varios, erec-

tos, tormentosos, luego glabrescentes;

hojas lineales, enteras a lobado-

pectinadas, tormentosas. Flores ama-

rillentas; frutos amarillentos, orbicula-

res, alados. En lugares pedregosos. LG:

2250-2600 m; LC: 2100-2200 m; RT: 2100-

2600 m. N%s. 81649, 83358, 83622.

Nasturtium officinale R. Br.

Aiton, Hort. Kew., ed 2, 4: 111. 1812.

in

Hierba perenne, glabra, radicante;

hojas pinadas; flores blancas. Introduci-

da. Crece a orillas de los cursos de agua.

LG: 1800-3100 m.

Schizopetalon rupestre (Barn.)

Reiche, Anales Univ. Chile 90: 139. 1895.

Hierba anual o posiblemente bianual,

de hasta 25 cm de altura, densamente to-

mentosa; tallos sencillos o poco ramosos.

Hojas pinatífidas. Flores con pétalos

blancos, pectinados; frutos vermiformes.

Las flores se abren de noche. Común des-

de la Junta de Valeriano hasta la zona ni-

val. LG: 1800-3850 m; LC: 2250-3750 m;

RT: 1800-3850 m. N's. 81518, 83388, 83421,

83578.

Kalin Arroyo et al.

17

Sisymbrium sp.

Hierba perenne híspida, con múltiples

tallos erectos, de hasta 50 cm de altura.

Hojas abrazadoras, ovadas, irregular-

mente dentadas; flores blancas; silicuas

arqueadas. Se observó una sola población

de esta especie, en las laderas al NE de la

Laguna Chica, en la subida hacia el Por-

tezuelo de Yerba Buena. LC: 3550 m. N?

83592.

Werdermannia pinnata (Barn.) O.EÉ.

Schulz, Notizbl. 11: 645. 1932.

Hierba perenne suculenta, glabra, con

numerosos tallos erectos, de hasta 35 cm

de altura; hojas pinatisectas, los segmen-

tos lineales. Flores cremas; frutos torulo-

sos. En lugares pedregosos ca. 3 km al

NE del Potrero de Toledo; escasa. LG:

2550-2750 m. N* 83380.

EUPHORBIACEAE

Euphorbia engelmannii Boiss., Cent.

Euphorb. 15. 1860.

Maleza anual. En lugares húmedos

entre la Junta de Valeriano y Las Papas.

LG: 1900-2200 m. N* 83317.

GENTIANACEAE

Gentiana prostrata Haenke in Jaca.,

Collectanea 2: 66, lám. 17. 1789.

Hierba pigmea anual (o perenne?),

erecta, a veces formando pequeños cés-

pedes; hojas opuestas, angostamente

aovado-espatuladas. Flores solitarias

terminales, azules hasta blancas; cápsu-

la sobre un pedúnculo alargado. Muy co-

mún en las vegas altoandinas. LG: 3200-

3800 m. Ns. 83512, 83558.

Gentianella gilliesii (Gilg) Martico-

rena et Arroyo, comb. nov.

Gentiana gilliesii Gilg, Bot. Jahrb.

Syst. 22: 317. 1896.

Hierba perenne, glabra, con varios

tallos ascendentes; hojas basales espatu-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

ladas, en roseta, las tallinas distantes.

Flores terminales, generalmente solita-

rias, corola lila-pálido con estrías azules;

cápsulas verdeoliva-oscuras. Escasa; en

las vegas altoandinas; vista solamente

en la Quebrada de Cantarito. LG: 3150-

3700 m. NOs. 81645, 83435.

GERANIACEAE

Erodium cicutarium (L.) L'Hérit. ex

Aiton, Hort. Kew. 2: 414. 1789.

Maleza anual naturalizada, de origen

mediterráneo. Localmente común en el

matorral de Haplopappus baylahuen

Remy. LG: 1800-2400 m.

Geranium core-core Steud., Linnaea

39: 438. 1856.

Hierba perenne decumbente; pubes-

cencia de pelos simples retrorso-

adpresos; hojas orbiculares a renifor-

mes; flores rosadas, estriadas. Crece en

lugares alterados en los bordes de los

ríos. LG: 1800-2300 m. N* 83303-A.

HALORAGACEAE

(Vell.)

Myriophyllum aquaticum

Verdc., Kew Bull. 23: 36. 1973.

Hierba perenne acuática, doica, con

tallos largos flotantes; hojas verticila-

das, finamente pectinadas, isomorfas.

Inflorescencia en espiga. En arroyos,

cursos lentos de agua y pozas de las ve-

gas altoandinas. LG: 1800-3700 m. N's.

83409, 83442.

HYDROPHYLLACEAE

Phacelia cumingii (Benth.) A. Gray,

Proc. Amer. Acad. Arts 10: 327. 1875.

Hierba anual decumbente, de hasta 20

cm de altura, con múltiples tallos rojizos

o, en algunas poblaciones, verde-claros.

Hojas pinatisectas, pubescente-

glandulosas. Inflorescencias en cimas es-

corpioides; flores pequeñas, blancas has-

ta lilas. Muy común desde el borde desér-

Kalin Arroyo et al.

18

tico hasta la zona nival. LG: 1800-3900 m;

LC: 2050-3650 m; RT: 1800-3900 m. Ns.

81579, 81586, 81588, 81601, 81629, 81642,

83/02, 83568.

Phacelia pinnatifida Griseb.

Wedd., Chloris And. 2: 85. 1859.

ex

Hierba perenne robusta, fétida, glan-

dulosa, de hasta 25 cm de altura, con

tallos decumbentes hasta ascendentes,

verde-claros hasta violáceos. Hojas pina-

tífidas a bipinatífidas. Inflorescencias en

cimas escorpioides densas, híspidas; flo-

res violáceas. Especie colonizadora de

las terrazas secas de los ríos; escasa.

LG: 3300 m; LC: 3500-3750 m; RT: 3300-

3750 m. Ns. 81563, 81578, 831425.

KRAMERIACEAE

Krameria cistoidea H. et A.,Bot.Bee-

chey Voy. 8, lám. 5. 1830.

Arbusto bajo, ramoso, con ramas

tiesas, tendidas, cenicientas. Hojas

obovado-oblongas con mucrón negro,

vellosas; flores rosado-vinosas; es-

tambres 4; fruto una cápsula globosa uni.-

seminada, cubierta de ganchos tiesos.

Crece en el matorral desértico cerca de

la Quebrada Albaricoque; escaso. RC:

ca: 1600-1800 m. N” 81692.

LABIATAE

Kurzamra pulchella (Clos) O.K., Re-

vis. Gen. Pl. 2: 521. 1891.

Hierba perenne olorosa, de hasta 4 cm

de altura, cortamente peluda, con múl-

tiples tallos delgados, emergentes, dis-

puestos en céspedes laxos. Hojas pe-

queñas, numerosas, elípticas, de color

verde-claro. Flores axilares hacia el

extremo de los tallos, vistosas, con cáliz

con segmentos plumosos; corola con lim-

bo violáceo y garganta blanca. Crece

apegada a las rocas en la zona altoandi-

na; observada sólo en la Quebrada de

Cantarito; común. LG: 3500-3800 m. Ns.

81597, 83466.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

LENTIBULARIACEAE

Utricularia gibba L. ssp. gibba, Sp.

P1. 18. 1753.

Hierba acuática carnívora, perenne,

glabra, con numerosos estolones filifor-

mes, de hasta 10 em de altura. Hojas fili-

formes, bifurcadas, alternas sobre los es-

tolones, con utrículos. Escapos florales

erguidos, 1-3-floros; corola amarillo-

intenso, espolonada; fruto una cápsula

globosa, apiculada. Se observó unica-

mente en las vegas alteradas de Potrero

de Toledo; crece fija en pozas. LG: 2400

m. N* 83352.

LOASACEAE

Caiophora coronata (Gill. ex Arn.)

Ber Ac, Bot. Misc. 3: 327. 1833.

Hierba perenne decumbente, de hasta

20 em de altura, cubierta de pelos tiesos

urticantes, blancos. Hojas verde-oscuras,

.bipinatífidas, dispuestas en rosetas la-

xas. Flores axilares entre las hojas, blan-

cas, grandes, de textura papirácea; cáp-

sula grande, obcónica. Esta hermosa es-

pecie andina crece generalmente protegi.-

da por las rocas en las alturas inferiores

de la zona andina; escasa. LG: 2800-2900

m. N%s. 81541, 83495, 83549.

Loasa malesherbioides Phil., Linna-

ea 33: 74. 1864.

Hierba anual con tallos amarillentos

frágiles, de hasta 25 cm de altura, cubier-

ta de pelos urticantes tiesos y finos. Hojas

aovadas, enteras hasta remotamente

dentadas. Flores blancas, dispuestas en

cimas cortas. Especie típica de los talu-

des ripiosos de la parte inferior de la zona

andina. LG: 1850-2950 m; LC: 2100-2950

m; RT: 1850-2950 m. N%s. 81545, 83342.

Mentzelia albescens (Gill. ex Arn.)

Griseb., Abh. Kónigl. Ges. Wiss. Góttin-

gen 19: 102. 1874.

Hierba perenne áspera, de hasta 50

cm de altura, erecta, con tallos blanco-

Kalin Arroyo et al.

19

plateados, huecos. Hojas lanceoladas,

sinuado-dentadas, con la base acorazona-

da. Flores en cimas, de color verde-

cremoso, pequeñas; cápsulas cilíndricas,

muy escabras. Crece sólo en el margen

desértico, en las laderas del valle del Río

Conay. RC: ca. 1600-1800 m. N* 81674.

LORANTHACEAE

Tristerix verticillatus (R. et P.)

Barlow et Wiens, Taxon 20: 307. 1971.

Hemiparásita sobre Schinus polyga-

mus (Cav.) Cabr. Flores rojas, largas,

fasciculadas; hojas carnosas, verde-

oscuras. LG: 1800-2500 m; LC: 2050-2150

m; RT: 1800-2500 m. N* 83307.

LYTHRACEAE

Pleurophora pungens D. Don, Edin-

burgh New Philos. J. 12: 112. 1831.

Arbusto pequeño, de hasta 20 cm de al.-

tura, ramificado desde la base, las ramas

horizontales, luego ascendentes; rígidas,

frágiles, blanco-plateadas. Hojas estipu-

ladas, lanceoladas, tiesas, muy punzan-

tes, cortamente pubescentes. Inflores-

cencia espiciforme, densa, las brácteas

semenjantes a las hojas; flores zigomor-

fas con pétalos rosados. Esta hermosa

planta crece preferentemente en taludes

arenosos en el margen desértico y en el

sector bajo de la zona andina. RC: ca.

1600 m; LG: 1800-2350 m; LC: 2000-2350

m; RT: ca. 1600-2350 m. Ns. 81693, 83636.

MALESHERBIACEAE

Malesherbia lactea Phil., Viage Des.

Atacama 192. 1860.

Hierba pequeña, perenne, con nume-

rosos tallos hojosos, blanquecinos, emer-

gentes. Hojas pequeñas, subarrosetadas,

ovadas, enteras, mucronadas, sin estípu-

las. Flores entre las hojas supremas, de

1.5 cm de largo; pétalos blancos con lige-'

ro tinte azul. Esta plantita se encuentra

preferentemente en ripios finos en la zo-

na andina, llegando casi al límite supe-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

rior de la vegetación. Vista sólo en la

Quebrada de Cantarito; escasa. Esta cita

amplía su límite distribucional sur. LG:

ca. 3200-4100 m. Ns. 81637, 83547.

Malesherbia multiflora Ricardi, Ga-

yana, Bot. 16: 126, fig. 35. 1967.

Hierba anual pubescente glandulosa,

muy ramosa, los individuos más de-

sarrollados formando matas redondas

cubiertas de flores. Hojas pequeñas, sin

estípulas, aovado-oblongas, irregular-

mente dentadas. Flores pequeñas, blan-

cas hasta lilas, con cáliz cortamente pu-

bescente. Crece principalmente en los

lechos secos de las quebradas intermiten-

tes. LG: 1800-2200 m; LC: 2000-2400 m;

RT: 1800-2400 m. Ns. 81661, 83306, 83350,

83619.

Malesherbia rugosa Gay, Fl. Chil. 2:

423. 1847.

Hierba perenne, de hasta 15 cm de al-

tura, con raíz engrosada de la que nacen

múltiples tallos ascendentes densamente

hirsutos y glandulosos. Hojas estipula-

das, grandes, obovado, lanceoladas, ate-

nuadas en la base, densamente pubescen-

tes, dentadas, con nervios prominentes.

Flores grandes, vistosas; cáliz cortamen-

te hirsuto; corola blanco-amarillenta.

Crece en rodados en laderas inclinadas

en la zona altoandina; especialmente co-

mún en el Portezuelo Yerba Buena.

Nuevo record sur para la especie en Chi-

le. LG: 2900 m; LC: 3400-3600 m; RT:

2900-3600 m. Ns. 83/05, 83607.

MALPIGHIACEAE

Dinemagonum maculigerum Phil.,

Anales Univ. Chile 82: 725. 1893.

Arbusto ramoso, erecto, ceniciento, de

hasta 35 cm de altura; tallos plateado-

pubescentes, con pelos medifijos. Hojas

pequeñas, angostamente lanceoladas.

Flores amarillas con el pétalo inferior ro-

jo; frutos anchamente alados, rojizos.

Crece en lugares arenosos, en el borde in-

Kalin Arroyo et al.

20

ferior del matorral de Senecio john-

stonianus Cabr. y en el matorral desérti-

co; escaso. RC: ca. 1600-1800 m; LG: 2050

m; RT: ca. 1600-2050 m. N”* 83649.

MALVACEAE

Cristaria andicola Gay, Fl. Chil. 1:

317. 1846.

Hierba perenne de hasta 15 cm de altu-

ra, densamente estrellado-pubescente,

con raíz gruesa, profunda, de la que na-

cen varios tallos ascendentes; hojas

aovadas, inciso-dentadas, con nervadura

prominente; flores azul-violáceas hasta

blancas; carpelos alados. Frecuente en

ambas cuencas. LG: 2850-3900 m; LC:

2350-3600 m; RT: 2350-3900 m. Ns. 81567,

83156, 83562.

Cristaria cordato-rotundifolia Gay,

Fl. Chil. 1: 328. 1846.

Hierba anual, de hasta 20 cm de altu-

ra, con tallos ascendentes poco hojosos,

estrellado-pubescentes. Hojas largamen-

te pecioladas, orbicular-acorazonadas,

3-5 lobuladas; lóbulos poco profundos.

Flores en racimos terminales; corola

azul-violácea; carpelos alados. En la par-

te inferior de ambas cuencas; escasa en

la época de colecta. LG: 1800-2100 m; LC:

2300 m; RT: 1800-2300 m. N” 81681.

Nototriche holosericea A.W. Hill,

Bull. Misc. Inform. 1927: 248. 1927.

Hierba perenne, depresa, arrosetada,

de hasta 9 cm de diámetro, con tallo sub-

terráneo grueso, anillado, del que nacen

varios tallos terminados en rosetas de ho-

jas; hojas aglomeradas, densamente

estrellado-pubescentes, flabeliformes, lo-

buladas; flores solitarias sobre los pe-

cíolos; pétalos blancos hasta lila-pálidos.

Crece exclusivamente en la zona nival,

cerca del límite superior de la vegeta-

ción. Se observó solamente en el Porte-

zuelo de Cantarito. LG: 3850 m. Ns.

81602, 83470.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

MIMOSACEAE

Acacia caven (Mol.) Mol., Sag. Stor.

Nat. Chili, ed. 2, 299. 1810.

Arbol pequeño de hasta 2.5 m de altu-

ra, con ramas largas, flexuosas; estipu-

las convertidas en espinas robustas; ho-

jas bipinadas, deciduas; hojuelas pe-

queñas, lineal-oblongas. Flores ama-

rillas, agrupadas en cabezuelas axilares

densas, globosas. Legumbre oblongo-

cilíndrica, pardo-negruzca, algo lustrosa.

Muy local cerca de los ríos. LG: 1800-2250

m; LC: 2100 m; RT: 1800-2250 m.

Prosopis chilensis (Mol.) Stuntz,

U.S.D.A. Bur. Pl. Industr. Invent. Seeds

3185: 1914.

Arbol de hasta 5 m de altura, con ra-

mas largas, flexuosas, péndulas; estipu-

las transformadas en espinas duras, lar-

gas; hojas bipinadas, colgantes, multifo-

lioladas. Flores verdoso-amarillentas en

espigas densas, alargadas. Legumbre la-

teralmente comprimida, alargada, ar-

queada. Crece en el mismo habitat que la

especie anterior. LG: 1900-2100 m; LC:

2050-2200 m; RT: 1900-2200 m.

NYCTAGINACEAE

Oxybaphus ovatus (R. et P.) Vahl,

Enum. Pl. 2: 40. 1805.

Hierba perenne con tallos ascenden-

tes, esparcidamente peluda, glandulosa;

hojas aovadas con la base cuneada hasta

acorazonada. Flores en panículas; invo-

luceros unifloros; perigonio purpúreo. Es-

casa; en terreno alterado, cerca de Las

Papas. LC: 2050 m. N* 83637.

ONAGRACEAE

Camissonia dentata (Cav.) Reiche

ssp. dentata, Anales Univ. Chile 98: 482.

1897.

Hierba anual primaveral, pequeña,

glabra, de hasta 6 cm de altura, con tallos

rojizos, decumbentes; hojas lineales has-

Kalin Arroyo et al.

21

ta lanceoladas, enteras hasta denticula-

das. Flores pequeñas; pétalos amarillos:

fruto una cápsula de hasta 3.5 cm de lar-

go. Localmente común en el margen de-

sértico y en el matorral de Senecio pro-

teus Remy y S. johnstonianus Cabr.,

entre la Junta de Valeriano y Las Papas.

LG: 1800-2250 m.

Epilobium barbeyanum Lev., Bull.

Herb. Boissier, sér. 2, 7: 589. 1907.

Hierba perenne densamente cubierta

por pelos glandulares, de hasta 30 cm de

altura; tallos decumbentes hasta ascen-

dentes, ramificados desde la base; hojas

opuestas, alternas en la inflorescencia,

delgadas, verdes, con el margen clara-

mente ondulado y rojizo, agudas, remota-

mente denticuladas. Inflorescencia erec-

ta; flores pequeñas; ovario, tubo floral y

sépalos cubiertos de pelos glandulosos;

pétalos rosado-pálidos, obovados, emar-

ginados. Crece en las vegas altoandinas

cerca del Potrero de Toledo junto a los

cursos de agua con Mimulus luteus L. y

M. glabratus H.B.K. var. parviflorus

(Lindl.) A. Grant; escasa en la zona de

estudio. LG: 2600-2850 m. N” 83/18.

Epilobium ciliatum Rafin., Med. Re-

pos., ser. 2, 5: 361. 1808.

Hierba perenne, de hasta 40 cm de al-

tura; tallos erectos, angulosos, corta-

mente pubescentes; hojas normalmente

opuestas, tenues, verde-claras, lanceola-

das hasta angostamente aovadas, ápice

agudo hasta acuminado, borde irregular-

mente aserrado. Inflorescencia erecta,

ramificada; flores pequeñas; tubo floral,

ovarios y sépalos rojizos, glandulares;

pétalos blancos o rosado-pálidos; cápsu-

las de hasta 6 cm de largo, estrigulosas.

Crece en lugares alterados a lo largo de

los ríos, sobre todo en áreas arenosas. Lo-

calmente común en la cuenca del Río La-

guna Grande cerca de la Junta de Vale-

riano. LG: 1800 m. N* 83304.

Gayophytum micranthum H. et A.,

Bot. Misc. 3: 311. 1833.

Hierba anual delicada, prostrada o de-

cumbente, de hasta 30 cm de altura, ra-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

mificada desde la base; tallos glabros

hasta ligeramente pubescentes, rojo-

oscuros, delgados, flexuosos; hojas line-

ares, encorvadas, de hasta 3 mm de

ancho, verdes con tinte rojo, glabras. Flo-

res pequeñas, subsésiles; cáliz glabro

hasta esparcidamente pubescente; péta-

los rosados; cápsula ascendente, de has-

ta 10 mm de largo, de contorno sinuado;

semillas hasta 10. Abundante en suelos

secos en la zona altoandina; muy va-

riable en tamaño. LG: 3250-3950 m; LC:

3300-3600 m; RT: 3250-3950 m. NOs. 81575,

81593, 81596, 83/451-A, 83588-4.

Oenothera affinis Cambess. in Sft.-

Hil., Fl. Bras. Merid. 2: 269. 1830.

Hierba anual o' bianual, robusta, erec-

ta, densamente hirsuta, de hasta 45 cm de

altura; tallos poco ramificados, algo roji-

zoS; hojas lanceoladas, agudas, casi ente-

ras o remotamente denticuladas. Flores

grandes; tubo calicinal de hasta 9 cm de

largo, hirsuto; sépalos hirsutos; pétalos

delicados, de 2.5 cm de largo, amarillo-

rosados; cápsulas rojizas. Localmente

distribuida en suelos alterados en la

cuenca del Río Conay y en las cuencas de

la Laguna Grande y la Laguna Chica.

LG: 1800-2800 m, LC: 2100-2150 m; RT:

1800-2800 m. N* 81687.

OXALIDACEAE

Oxalis compacta Gill."ex H. et A.,

Bot. Misc. 3: 162. 1833.

Planta perenne en cojines planos de

hasta 50 cm de diámetro, muy duros y

apretados; raíces y tallos subterráneos

leñosos. Hojas trifolioladas, numeroísi-

mas, muy pequeñas, de color verde-

claro. Flores solitarias, cortamente pe-

dunculadas sobre los céspedes, ama-

rillas. Crece en lugares rocosos, cerca del

límite de la vegetación. Observada sola-

mente en el Portezuelo Vizcachas. LG:

3800-4000 m. N* 835614.

Oxalis puberula Phil., Anales Univ.

Chile 27: 342. 1865.

Hierba anual, de hasta 12 cm de altu-

ra, de color verde-pardusco, densamente

Kalin Arroyo et al.

22

pubescente-glandulosa; tallo.corto; hojas

muy numerosas, largamente pecioladas,

trifolioladas; folíolos obcordados; pedún-

culos filiformes, del largo o ligeramente

más largos que las hojas, furcados; flo-

res amarillas. Común en ambas cuencas

en el matorral de Senecio johnstonianus

Cabr. LG: 1850-2600 m; LC: 2100-2300 m;

RT: 1850-2600 m. Ns. 83323, 83345), 83628.

Oxalis uspallatensis Knuth, Pflan-

zenr. 95: 222. 1930.

Hierba anual pequeña, de hasta 2.5

cm. de altura, con raíz larga, filiforme.

Hojas trifolioladas, numerosas, larga-

mente pecioladas; pecíolos filiformes,

casi glabros; folíolos obcordados, blanco-

pubescentes. Pedúnculos algo más cortos -

que las hojas, unifloros; cáliz violáceo,

ciliado; corola amarilla. Crece en el ma-

torral de Adesmia sentis Phil. cerca del

Portezuelo Vizcachas. Constituye un

nuevo récord sur para esta especie. LG:

3550-3900 m. NOs. 81650, 83563.

PAPAVERACEAE

Argemone subfusiformis Ownbey

ssp. subfusiformis, Brittonia 13: 97. 1961.

Hierba erecta, anual (?) o perenne, de

ca. 75cm de altura, glauca, glabra. Hojas

tiesas, semiabrazadoras, irregularmente

dentadas; dientes grandes, terminados

en espina. Flores grandes, vistosas, blan-

cas. Cápsulas coriáceas, con espinas pa-

tentes. Crece solamente en taludes areno-

sos en el margen desértico. LG: 2300 m.

N?* 81676.

PAPILIONACEAE

Adesmia aphylla Clos in Gay, Fl.

Chil. 23177. 1847

Arbusto inerme, globoso, viscoso-

pegajoso, de hasta 1.5 m de altura; tallos

largos, verde-claros, fotosintéticos; ho-

jas muy escasas, crasas, caducas, 1-5-

yugas; folíolos abovado-oblongos, borde

denticulado. Flores bracteadas, dispues-

tas en racimos alargados, rígidos; brác-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

teas crenadas, crasas; corola amarilla;

lomento pauciarticulado, plumoso. Crece

preferentemente en laderas rocosas muy

inclinadas junto con Ephedra breana

Phil. y Gymnophyton robustum Clos; lo-

calmente común. LG: 1850-2850 m; LC:

2550-2950 m: RT: 1850-2950 m. N's. 81538,

83393, 83616.

Adesmia argyrophylla Phil., Linna-

ea 28: 631. 1857.

Arbusto bajo, ramoso, hemisférico, de

hasta 50 cm de altura; tallos robustos,

terminados en espinas ramificadas

pseudodicotomicamente, fotosintéticos,

seríceo-estrigosos; hojas escasas, predo-

minantemente 3-yugas, seríceo-

estrigosas; folíolos elípticos a aovados,

obtusos. Flores pequeñas, amarillas, dis-

puestas en racimos espinescentes; estan-

darte pubescente; lomento con abundan-

tes setas plumosas largas. Localmente

común en las laderas inclinadas en las

partes inferiores de las cuencas del Río

Laguna Grande y Río de Valeriano. LG:

1800-2400 m; LC: 2000-2350 m; RT: 1800-

2400 m. N%s. 81657, 81669, 83325.

Adesmia echinus K. Presl, Symb.

Bot. 2: 14, lám. 61. 1834.

Arbusto bajo formando un cojín com-

pacto de hasta 15 cm de altura, coronado

por espinas bifurcadas, duras, blanqueci-

nas, estrigosas; hojas 3-4-yugas, estrigo-

sas; folíolos oblongos, agudos; flores dis-

puestas en corimbos pequeños sesiles en

las ramas no espinescentes; corola

amarillo-anaranjada; estandarte pubes-

cente; lomento pauciarticulado con arte-

jos plumosos. Muy abundante en la zona

altoandina en la cuenca de Quebrada de

Cantarito y en el Portezuelo Vizcachas.

Facilmente distinguible de Adesmia remy

ana Phil. por las espinas blanquecinas y

la disposición de las flores en corimbos en

las ramas viejas no espinescentes. LG:

3350-3900 m; LC: 3650 m; RT: 3350-3900

m. N's. 81652, 83583-A.

Adesmia eremophila Phil.,

Des. Atacama 189. 1860.

Hierba perenne, decumbente hasta di-

varicada, con raíz axonomorfa profunda;

Viage

Kalin Arroyo et al.

23

follaje densamente gríseo-pubescente;

hojas 7-10-yugas; folíolos anchamente

obovados hasta obtriangulares, con bor-

de denticulado. Flores pequeñas, dis-

puestas en racimos simples; corola

amarillo-clara; estandarte glabro,

estriado, con una mancha obseura en la

base. Lomento con setas plumosas finas

apretadas en arco sobre el artejo. Crece

en suelos arenosos en las partes infe-

riores de las cuencas del Río Laguna

Grande y Río de Valeriano. LG: 1950-2300

m; LC: 2050-2650 m; RT: 1950-2650 m.

Ns. 81675, 83645 .

Adesmia parviflora Clos in Gay, Fl.

Chil. 2: 158. 1847.

Hierba perenne inerme de hasta 35cm

de altura con raíz vertical profunda y

múltiples tallos glandulosos, ascenden-

tes; hojas 5-9-yugas, largamente peciola-

das; folíolos obovado-oblongos, obtusos,

esparcidamente cubiertos con pelos lar-

gos blancos en ambas caras. Flores pe-

queñas, largamente pediceladas, dis-

puestas en racimos laxos; pedicelos glan-

dulosos; corola amarilla; estandarte pu-

bescente. Lomento pluriarticulado; arte-

jos (ca. 6) lenticulares, con setas plumo-

sas encorvadas en arcos radiales. Crece

en el matorral de Haplopappus

baylahuen Remy y Senecio proteus

Remy; localmente común. LG: 1950-2100

m; LC: 2050-2300 m; RT: 1950-2300 m.

Ns. 81656, 81662, 83346, 83611, 83629.

Adesmia pedicellata H. et A., Bot.

Misc. 3: 191. 1833.

Arbusto espinoso, ramoso, de hasta 1

m de altura con follaje verde-pálido; ra-

mas jóvenes cubiertas con pubescencia

glandulosa, glabras con la edad, ama-

rillentas; hojas 4-6-yugas, seríceas; fo-

líolos pequeños, anchamente obovados,

cóncavos, agudos. Flores separadas de

las espinas, largamente pedunculadas;

pedúnculos glandulosos; corola ama-

rilla; lomento con 1-3 artejos largamente

rojizo-plumosos. Abundante en el ma-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

torral subandino en ambas cuencas. Cre-

ce con Ephedra breana Phil., Senecio

proteus Remy y Gymnophyton robustum

Clos. LG: 1800-2500 m; LC: 2050-3000 m;

RT: 1800-3000 m. N9s. 81530, 83321.

Adesmia remyana Phil., Anales

Univ. Chile 84: 435. 1893.

Arbusto formando un cojín bajo de

hasta 30 cm de altura, coronado con espi-

nas bifurcadas, pubescentes, verde-

pálidas; ramas blanco-amarillentas, des-

cascaradas; hojas verde-plomizas, 2-4-

yugas, seríceas; folíolos anchamente

obovados, obtusos a retusos, parte supe-

rior de la lamina cortamente denticula-

da. Flores solitarias sobre las espinas,

largamente pedunculadas; cáliz glandu-

lar; corola amarilla; estandarte pubes-

cente; lomento pauciarticulado; artejos

plumosos; setas blancas, algunas rojizas.

Crece en la zona altoandina ocupando los

mismos hábitats de Adesmia echinus K.

Presl. LG: 3150-3950 m; LC: 3350-3800 m;

RT: 3150-3950 m. N* 81639.

Adesmia sentis Phil., Anales Mus.

Nac. Chile, Secc. 2, 8: 73. 1891.

Arbusto robusto, espinoso, glanduloso-

resinoso, de hasta 1.5 m de altura, con

tallos pardo-amarillentos y corteza parti-

da, suelta; hojas verde-claras, fascicula-

das en braquiblastos, 4-5-yugas, resino-

sas y con pelos no glandulosos aislados;

folíolos obovados, obtusos a subagudos.

Flores fasciculadas sobre las ramas espi-

nescentes; cáliz glandular; corola

amarillo-oscura; estandarte externa-

mente pubescente hacia la base. Lomen-

to pauciarticulado; artejos cubiertos con

setas lanosas grises. Especie dominante,

formando matorrales extensos en las dos

cuencas. Se distingue fácilmente de

Adesmia pedicellata H. et A. por las glán-

dulas resinosas y las flores fasciculadas.

LG: 2700-3700 m; LC: 3100-3700 m; RT:

2700-3700 m. N* 81582.

Adesmia spuma Werd. ex Burk.,

Darwiniana 3: 337. 1939.

Hierba perenne delicada, en cojines

herbáceos, de hasta 6 cm de altura con

Kalin Arroyo et al.

24

tallos débiles, blanquecinos formando

una copa hemisférica pequeña; hojas 5-6-

yugas, plomizo-rojizas, hirsutas, la pu-

bescencia blanca; folíolos obovado-

oblongos, subobtusos. Flores pequeñas,

axilares, subsésiles, completamente es-

condidas entre las hojas; corola ama-

rilla; estandarte glabro. Lomento 1-2-

articulado, no plumoso. Crece únicamen-

te en taludes ripiosos cerca del límite su-

perior de la vegetación. Observada en el

Portezuelo de Cantarito y el Portezuelo

Vizcachas. LG: 3850-3900 m; LC: 3900 m;

RT: 3850-3900 m. Ns. 81608, 83/58, 83573.

Adesmia subterranea Clos in Gay,

PIFChil27 19241847

Cojín leñoso, duro, espinoso, muy pla-

no, parcialmente enterrado en el suelo,

de hasta 60 cm de diámetro; espinas es-

condidas entre las hojas; hojas 3-yugas,

verdosas, subseríceas; folíolos oblongos,

agudos. Flores axilares o raramente en

racimos muy breves, erectas sobre el co-

jín; corola amarillo-anaranjada; estan-

darte con estrías oscuras. Lomento

pauciarticulado, plumoso. Cubre grandes

extensiones en la zona altoandina, llegan-

do hasta la zona subnival. Especialmente

abundante en el Portezuelo de Cantarito

y el Portezuelo Vizcachas. LG: 3350-4000

m. Ns. 81580, 83476.

Adesmia sp. 1, serie Microphyllae

Burk.

Arbusto bajo, ramosísimo, hemisféri-

co, espinoso, de hasta 30 cm de altura; ra-

mas jóvenes espinosas, cortamente glan-

dulosas; hojas 3-4-yugas, cortamente pe-

cioladas, seríceas; folíolos obovado-

oblongos, agudos. Flores dispuestas

sobre las espinas; cáliz pubescente; coro-

la amarillo-oscura; estandarte glabro.

Lomento pauciarticulado, densamente

lanoso-plumoso. Muy escaso; en el ma-

torral de Haplopappus baylahuen Remy

en las cuencas inferiores del Río Laguna

Grande y Río de Valeriano. LG: 2350-2650

m; LC: 2400-2550 m; RT: 2350-2650 m. N* .

83390.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

Adesmia sp. 2, serie Microphyllae

Burk.

Arbusto erecto, robusto, espinoso de

hasta 1.5 m de altura; ramas amarillen-

tas hasta pardo-oscuras, con corteza par-

tida, algo estriadas; espinas ramificadas

pseudodicotomicamente; hojas 4-yugas;

folíolos abovado-elípticos, agudos, densa-

mente canescentes. Flores amarillas, en

las espinas; lomento desconocido. Pare-

cido a Adesmia sentis Phil., del que di.-

fiere por las hojas densamente pubescen-

tes en ambas caras. Crece en la parte su-

perior del rango altitudinal de 4. sentis;

especialmente abundante en los faldeos

que rodean a la Laguna Grande. LG:

2800-3150 m; LC: 2750-3350 m; RT: 2750-

3350 m. N9s. 81548, 83396.

Adesmia sp.

En la Quebrada Yerba Buena se colec-

tó material de una especie subarbustiva

de Adesmia con pelos setulosos, glándu-

las muy resinosas, redondeadas, hojas

pequeñas, crasas, 3-yugas y folíolos pro-

fundamente marginados. Este conjunto

de caracteres es típico de las series Bal-

samicae y Bracteatae; la ausencia de

frutos en el material impide su identifica-

ción más precisa. LC: 2700 m. N* 83613-B.

Astragalus bustillosii Clos in Gay,

pitch: 2>117. 1847.

Hierba perenne rizomatosa, de hasta 3

cm de altura, formando pequeños céspe-

des; tallos cortos; hojas numerosas, con

folíolos pequeños, algo estrigosos; flores

solitarias, cortamente pedunculadas; cá-

liz con pelos blancos y negros; corola

blanquecina con estandarte azulejo; le-

gumbre lateralmente comprimida, pu-

bescente. Común en las vegas altoandi-

nas entremezclada con los cojines de ci-

peráceas y juncáceas. LG: 2850-3700 m.

Ns. 81512, 83557-A.

Astragalus cf. cruckshanksii (H. et

A.) Griseb., Abh. Kónigl. Ges. Wiss. Gót-

tingen 24: 103. 1879.

Hemos referido a esta especie mate-

rial estéril encontrado entre Laguna Chi-

Kalin Arroyo et al.

25

ca y Portezuelo Yerba Buena. LC: 2900-

3000 m. N* 83593.

Astraglus vagus (Clos) Reiche, Ana-

les Univ. Chile 97: 563. 1897.

Hierba perenne, de hasta 20 cm de al.

tura; tallos varios, glabrescentes; hojas

con pubescencia rala de pelos blancos re-

costados; flores en racimos algo más cor-

tos que las hojas; corola amarillenta pin-

tada de azulejo y rosado; legumbres

infladas, apiculadas, cortamente pubes-

centes. Crece preferentemente en los bor-

des pedregosos periódicamente inunda-

dos de los ríos. LG: 2800-3650 m. Ns.

81568, 83399, 83/52.

Geoffroea decorticans (Gill. ex H. et

A.) Burk., Darwiniana 9: 19. 1949.

Arbusto alto o árbol de hasta 3 m de al.

tura. Tronco y ramas viejas con corteza

pardo-amarillenta, descascarada; rami-

tas algo espinosas. Hojas caducas, pina-

das, generalmente con 5-9 pares de fo-

líolos elípticos u oblongos, enteros, co-

riáceos, glabros o finamente pubérulos.

Flores en racimos que nacen de los bra-

quiblastos de las ramas o ramitas espino-

sas; corola amarillo-anaranjada con

estrías rojas; fruto una drupa ovoide o

globosa, glabra, lisa y lustrosa, de color

pardo-amarillento. LG: 2050 m; LC: 2000

m; RT: 2000-2050 m.

Trifolium polymorphum Poir., En-

cycl. 8: 20. 1808.

Planta perenne rizomatosa, estoloní-

fera; hojas trifolioladas, pilosas; tallo

floral de hasta 8 cm de altura, terminado

en una cabezuela de flores rosado-

rojizas. Se observó solamente en áreas

pantanosas alteradas entre Las Papas y

Potrero de Toledo. LG: 2250-2400 m.

PLANTAGINACEAE

Plantago barbata G. Forster var.

pauciflora (Hook. f.) Pilger, Bot. Jahrb.

Syst. 50, Suppl.: 64. 1914.

Hierba perenne arrosetada, con rizo-

ma grueso; hojas numerosas, linear-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

lanceoladas, generalmente con 2-3 pares

de dientes obtusos a cada lado, glabras,

excepto en la vaina que lleva largos pelos

lanosos blancos; espigas cortas, 2-6 flo-

ras, sobre pedúnculos de hasta 7 cm de

largo. Abundante en las vegas altoandi-

nas. LG: 2800-3700 m. N%s. 83411, 83/85.

Plantago hispidula R. et P., Fl. Pe-

ruv. Chili lam. 18, 18D: 1798:

Hierba anual primaveral, pubescente,

de hasta 7 cm de altura; raíz larga, fili-

forme; hojas lineales; tallos florales del-

gados, terminados en espiga corta,

pauciflora. Localmente común en el ma-

torral de Senecio johnstonianus Cabr.

cerca de la Junta de Valeriano. LG: 1800-

2200 m. N* 83305-B.

Plantago pachyneura Steud., Flora

32: 406. 1849.

Hierba perenne, arrosetada, de hasta

40 cm de altura, con raíz gruesa profunda

y algunas raíces laterales más delgadas;

tallo muy corto; hojas grandes, elípticas,

con pecíolo muy ancho y margen con al-

gunos dientes gruesos, casi glabras o con

algunos pelos blancos dispersos; tallo flo-

ral blanco-pubescente; flores muy nume-

rosas, en espigas de hasta 18 cm de largo;

cápsula 3-seminada. Crece en los bordes

húmedos de los ríos. Se observó en la

cuenca del Río Laguna Grande entre la

Junta de Valeriano y Quebrada Cande-

lilla. LG: 2000-2700 m. N* 83386.

POLEMONIACEAE

Gilia crassifolia Benth., Edwards's

Bot. Reg. 19: sub tab. 1622. 1833.

Hierba anual glandulosa, de hasta 20

cm de altura, ramosa desde la base. Ho-

jas radicales rosuladas, algo carnosas,

glabras hasta lanosas, pinatisectas; seg-

mentos anchos, mucronados. Hojas cauli-

nares escasas, más pequeñas que las ba-

sales. Flores agrupadas hacia el extremo

de las ramas; cáliz violáceo; corola con

tubo blanquecino y limbo azul. Muy co-

mún en la zona de estudie desde el mar-

Kalin Arroyo et al.

26

gen desértico hasta la zona nival. Muy

variable en tamaño y en hábito. LG: 1800-

3900 m; LC: 2350-3800 m; RT: 1800-3900

m. N9s. 81564, 81628, 83381, 83/01, 83431-A,

83554, 83596.

POLYGONACEAE

Chorizanthe commisuralis Remy in

Gay y FriChlo2s 8 ole

Hierba anual, erecta, frágil, de hasta

20 cm de altura; tallos dicótomos, hincha-

dos en las dicotomías, cenicientos hasta

rojizos; hojas principalmente basales,

arrosetadas, pubescentes, las tallinas

más pequeñas, opuestas en las dicoto-

mías de los tallos; flores pequeñas, sési-

les, solitarias en las dicotomías o de a

tres en el extremo de los tallos; involucro

con dientes uncinados. Común en el ma-

torral de Senecio johnstonianus Cabr., en

ambas cuencas. LG: 1800-2350 m; LC:

2000-2550 m; RT: 1800-2550 m. Ns. 83343,

83361, 83623.

Chorizanthe umbellata Phil., Linna-

ea 33; 225. 1864.

Subarbusto erecto de hasta 15 cm de

altura, poco ramoso, verde-plomizo; raíz

gruesa, leñosa, profunda; hojas aglome-

radas en la base de los tallos, envainado-

ras, lanceolado-lineares, revolutas,

mucronadas; vainas viejas de color roji-

zo; tallos glabrescentes, dicótomos;

inflorescencia dicotómicamente ramifi-

cada; involucro amarillento con dientes

no uncinados; flores inclusa. Crece en las

fisuras de las rocas; escaso. Se observó

unicamente cerca de Las Papas. LC:

2100. N* 83641.

Muehlenbeckia hastulata (J.E.

Sm.) Johnst., Contr. Gray Herb. 81: 88.

1928.

Arbusto polígamo-dioico, leñoso, tre-

.pador, glabro; ramas pardas flexuosas;

hojas pecioladas, oblongas, obtusas hasta

agudas, con la base hastado-sagitada;

flores pequeñas, erema-verdosas, en ra-

cimos largos axilares y terminales. Cre-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

ce enla zona de matorral de Senecio john-

stonianus Cabr.; más abundante en áreas

de vegetación alterada. LG: 1850-2300 m;

LC: 2050-2250 m, RT: 1850-2300 m.

Oxytheca dendroidea Nutt. ssp. chi-

lensis (Remy) Ertter, Brittonia 32: 81.

1980.

Hierba anual glandulosa, de color

verde-oscuro hasta rojizo, normalmente

con un solo tallo principal ramificado di.-

cotómicamente, de hasta 25 cm de altu-

ra; hojas radicales arrosetadas, tiesas,

lineales a lineal-oblanceoladas, especial.

mente hirsutas y glandulosas en el haz,

agudas a obtusas; hojas caulinares rudi-

mentarias o ausentes. Inflorescencia di.-

casial, abierta; flores pequeñas, dispues-

tas en grupos de 2-4 en involucros sésiles

angostamente turbinados; lóbulos trian-

gulares, unidos hasta la mitad de su lon-

gitud, purpúreos, con una arista muy

conspicua de hasta 3 mm de largo; péta-

los blancos hasta rosados, dimorfos, pu-

bescentes; estambres inclusos. Fruto un

aquenio globoso-lenticular. Común en ta-

ludes y en suelos pedregosos; de amplia

distribución altitudinal en la zona de estu-

dio. LG: 2350-3550 m; LC: 2350-3550 m;

RT: 2350-3550 m. N%s. 81644, 83367, 83382,

83586.

Polygonum aviculare L., Sp. Pl. 362.

OS:

Hierba anual con tallos tendidos. Ho-

jas lanceoladas hasta aovadas, algo agu-

das, las del tallo más grandes que las de

las ramas; ócreas plateado-hialinas, dé-

bilmente venosas; pecíolos muy cortos,

incluidos en la ócrea. Flores solitarias o

en glomérulos axilares; segmentos del

perianto de color verde con margen rosa-

do o blanco; nuez opaca, incluida en el pe-

rianto. Crece en suelos arenosos altera-

dos en los bordes de los cursos de agua.

LG: 1800-2250 m.

PORTULACACEAE

Calandrinia bandurriae Phil., Ana-

les Univ. Chile 85: 316. 1894.

Hierba anual glandulosa, prostrada,

con ñumeroso tallos ramosos de color ro-

Kalin Arroyo et al.

27

jo; hojas distantes, lineales a oblanceola-

das. Flores pequeñas, dispuestas en glo-

mérulos densos, subsésiles, no superados

por las hojas involucrales, de hasta 4 mm

de diámetro; pétalos rosado-oscuros has-

ta casi blancos; cápsulas pequeñas, api-

culadas. Común en suelos áridos en la zo-

na altoandina del área de la Laguna

Grande, llegando hasta la zona subnival.

Fácilmente distinguible de Calandrinia

floribunda Phil., por sus flores dispuestas

en glomérulos densos y por su rango alti-

tudinal distinto. LG: 3200-3950 m. N's.

81570-B, 83566.

Calandrinia copiapina Phil., Anales

Mus. Nac. Chile, Secc. 2, 8: 25. 1891.

Hierba perenne, con raíz gruesa rami-

ficada en su parte superior; tallos

prostrados, rojizos, escasamente pubes-

centes, con las hojas amontonadas en la

base; hojas lanceoladas, laxamente cu-

biertas de pelos largos, recostados seri-

ceos. Flores pequeñas, pedunculadas, en

racimos laxos; sépalos cubiertos por pe-

los cortos y pelos largos blancos recosta-

dos; pétalos rosados hasta casi blancos.

Crece exclusivamente en la zona altoan-

dina llegando a la zona subnival; local.

Observada únicamente en la cuenca de

Quebrada de Cantarito. LG: 3400-3950 m.

Ns. 81636, 83575.

Calandrinia fasciculata Phil., Linna-

ea 28: 645. 1857.

Hierba anual glabra, con tallos sucu-

lentos, ascendentes, de hasta 25 cm de

largo; hojas distantes en el tallo, oblongo-

lanceoladas, crasas, verde-claras, ate-

nuadas en el peciolo. Flores pequeñas,

subsésiles, en varias espigas unilaterales

cortas; sépalos ovales a casi circulares,

enteros; pétalos blancos. Crece princi-

palmente en los cursos de los ríos inter-

mitentes en el área del matorral de Sene-

cio johnstonianus Cabr. LG: 1800-2050 m;

LC: 2050-2150 m; RT: 1800-2150 m. Ns.

83316, 83618.

Calandrinia floribunda Phil., Linna-

ea 33: 78. 1864.

Hierba anual primaveral, grácil, difu-

samente ramificada, glabra o escasa-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

mente glanduloso-puberula, de hasta 8

cm de altura. Hojas lineales, muy pe-

queñas, escasamente velludas, rojizas.

Flores diminutas, numerosas, pedicela-

das, en cimas racemiformes laxas; sépa-

los sembrados de pelos cortos y de pelos

largos blancos entremezclados; pétalos

purpúreos. Crece en el matorral de Sene-

cio johnstonianus Cabr. y S. proteus

Remy. LG: 1800-2700 m; LC: 2350-2600 m;

RT: 1800-2700 m. N%s. 81526, 83303-B.

Calandrinia grandiflora Lindl., Bot.

Reg. 14: lám. 1194. 1828.

Hierba perenne robusta, glabra, de

hasta 45 cm de altura; tallos crasos, su-

culentos; hojas grandes, romboideas 0

obovadas, apiculadas, atenuadas en el

peciolo, glaucas. Flores grandes, larga-

mente pediceladas, dispuestas en raci-

mos sencillos; sépalos verde-

amarillentos, con nervios obscuros evi-

dentes; pétalos purpúreos hasta rosados,

delicados; pedúnculos de las cápsulas

maduras doblados hacia abajo. Hermosa

planta que crece en lugares rocosos y en

arroyos intermitentes en el margen de-

sértico y en el área del matorral de Sene-

cio johnstonianus Cabr.; localmente co-

mún. LG: 1800-2700 m; LC: 2050-2350 m;

RT: 1800-2700 m. N9s. 81682, 83385, 83631.

Calandrinia leucocephala Phil.,

Viage Des. Atacama 195. 1860.

Hierba anual pequeña, velluda, con

tallos verde-rojizos, prostrados, casi

desprovistos de hojas. Hojas lineales, es-

casamente velludas, amontonadas en la

base de los glomérulos. Flores pequeñas,

subsésiles, en glomérulos muy densos de

hasta 8 mm de diámetro; sépalos densa-

mente sembrados de pelos largos blan-

cos; pétalos rosados. Común en la zona

altoandina en la cuenca de la Laguna

Grande. Crece con C. bandurriae Phil. y

C. copiapina Phil. Distinguible de C. ban-

durriae por los glomérulos más grandes

cubiertos de pelos largos blancos y de C.

copiapina por su hábito anual. LG: 3400-

3850 m. N%s. 81557-B, 81574, 81624, 83431-B,

83565.

Kalin Arroyo et al.

28

Calandrinia cf. longiscapa Barn. in

Gay, Fl. Chil. 2: 492. 1847.

Hemos referido a esta especie mate-

rial de un solo individuo observado en el

valle del río Laguna Grande, cerca de

Quebrada Candelilla. Se trata de una

planta con hojas crasas, obtusas,

glaucas, de hasta 40 cm de altura, con flo-

res grandes, purpúreas con aproximada-

mente 15 estambres y sépalos listados.

LG: ca. 2800 m. N” 81660.

Calandrinia occulta Phil.,

Des. Atacama 194. 1860.

Viage

Hierba perenne glabra, formando cés-

pedes densos, verde-oscuros; hojas arro-

setadas, oblanceoladas a oblongas, obtu-

sas, suculentas, con el peciolo ensancha-

do en una vaina hialina abrazadora. Flo-

res grandes, solitarias, cortamente pe-

dunculadas, los pedúnculos no sobrepa-

san a las hojas; sépalos aovados, enteros,

mucronados, verdes; pétalos blancos con

la base de color rojo-ladrillo; anteras

amarillentas. Habita en las vegas altoan-

dinas, normalmente cerca de los bordes y

también en áreas de deshielo; común en

las vegas de Quebrada Cantarito y

Quebrada Vizcachas. LG: 3200-3800 m.

Ns. 81620, 83474, 83484, 83513.

Calandrinia picta Gill. ex Arn., Edin-

burgh J. Nat. Geogr. Sci. 3: 356. 1831.

Hierba perenne glabra, suculenta;

tallos prostrados o ascendentes, rojizos;

hojas glaucas, distantes en los tallos,

anchamente elípticas a espatuladas, ob-

tusas. Flores cortamente pediceladas, en

cimas; sépalos suborbiculares, membra-

nosos, emarginados, amarillento-

verdosos, con nervaduras obscuras muy

evidentes; pétalos blancos, a veces de co-

lor salmón. Muy frecuente en ambas

cuencas especialmente en la zona altoan-

dina; en taludes ripiosos y en suelos are-

nosos. LG: 2350-4000 m; LC: 3400-3700 m;

RT: 2350-4000 m. N%s. 81570-A, 81587-A,

81606, 83462-A.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

Calandrinia spicata Phil.,

Des. Atacama 195. 1860.

Viage

Hierba anual glabra, con tallos hori-

zontales de los cuales nacen varios tallos

derechos. Hojas distantes en el tallo,

oblongo-obovadas, atenuadas en el pe-

cíolo, suculentas, verde-claras. Flores

pequeñas, dispuestas en varias espigas

terminales largas, curvas, muy apreta-

das, con las flores en dos filas vueltas ha-

cia el mismo lado; brácteas membrano-

sas, evidentes; sépalos agudos; pétalos

blancos. Planta del margen desértico;

crece abundantemente en los taludes are-

nosos en el valle del Río Conay. RC: ca.

1600-1800 m. N* 81677.

Lenzia chamaepitys Phil., Anales

Univ. Chile 23: 381. 1863.

Hierba perenne pequeña, glabra, de

hasta 4 cm de altura; raíz delgada, pro-

funda; tallo corto, a veces dicótomo, sub-

terráneo. Hojas numerosísimas, muy

densas, erectas e incurvas, tiesas, line-

ales, acuminadas y algo aristadas, con

margen hialino, café-verdosas o algo

negruzcas. Flores ocultas entre las hojas

superiores, amarillo-anaranjadas. Crece

exclusivamente en los taludes ripiosos

cerca del límite superior de la vegeta-

ción. Observada únicamente en los falde-

os del Cerro de Cantaritos. LG: 3800-3950

m. N%s. 81609, 83/69, 83/99.

Portulaca oleracea L., Sp. Pl. 445.

1753,

Hierba anual tendida, carnosa, glabra

excepto en la inserción de las hojas donde

hay algunos pelos largos blancos. Tallos

rojizos, de hasta 25 cm de largo. Hojas es-

patuladas, obtusas. Flores axilares; pé-

talos amarillos. Crece en suelos arenosos

alterados en los bordes de los cursos de

agua. LG: 1800-2200 m. N* 83315.

Philippiamra celosioides (Phil.),

O.K., Revis. Gen. Pl. 1: 58. 1891.

Hierba perenne (?), ramosa, erecta O

algo decumbente, de hasta 30 cm de altu-

Kalin Arroyo et al.

29

ra, glabra, glauca. Hojas carnosas, sési-

les, ligeramente abrazadoras, oblongas,

apiculadas. Flores pequeñas, densamen-

te aglomeradas en el extremo de los

tallos; brácteas membranosas, apicula-

das, amarillentas y teñidas de rojo-

violáceo. Frecuente en ambas cuencas en

el matorral de Senecio johnstonianus

Cabr. LG: 2200-2900 m; LC: 2050-2500 m;

RT: 2050-2900 m. N* 83627.

Philippiamra fastigiata (Phil.) Pax

et K. Hoffm., Natúrl. Pflanzenfam. 2a.

ed. 16c. 261. 1934.

Hierba anual glabérrima, suculenta,

ramosa desde la base, de hasta 15 cm de

altura. Hojas oblongo-espatuladas, obtu-

sas hasta algo agudas. Flores en glomé-

rulos apicales densos; brácteas membra-

nosas aovadas, teñidas de rojo-violáceo.

Escasa; en taludes arenosos entre Potre-

ro de Toledo y Quebrada Candelilla. LG:

ca. 2400-2800 m. N* 81535.

PRIMULACEAE

Anagallis alternifolia Cav. var. re-

pens (D'Urv.) Knuth, Pflanzenr. 22: 330.

1905.

Hierba perenne rizomatosa; tallos

tendidos de hasta 8 cm de largo; hojas al-

ternas, aovadas, glabras; flores axilares,

rosadas; fruto una cápsula circuncisa.

Crece en las vegas; escasa. Observada

en la cuenca de Quebrada Yerba Buena.

LC: 2800 m. N* 83609.

RAFFLESIACEAE

Pilostyles berteroí Guill., Ann. Sci.

Nat. Bot:. sér. 2, 2:21, 1ám AS

Planta parásita muy pequeña, dioica,

reducida a una flor sésil, glabra, rojo-

violácea con bordes blanquecinos, rode-

ada de varias brácteas aovadas de color

pardo. Parásita sobre Adesmia pedicella-

ta H.et A.; las plantitas densamente dis-

puestas sobre los tallos de la planta para-

sitada. Encontrada en la cuenca del Río

Laguna Grande entre la Junta de Vale-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

riano y Las Papas. LG: ca. 1800-2000 m.

N48333 7%

RANUNCULACEAE

Ranunculus cymbalaria Pursh, Fl.

Amer. Septentr. 2: 392. 1814 .

Hierba perenne acuática, glabrescen-

te, de hasta 10 cm de altura con raíces

fibrosas y tallos reptantes radicantes en

los nudos. Hojas inferiores largamente

pecioladas, con vainas estipulares

amplexicaules hialinas; lámina suborbi-

cular hasta reniforme, 3-nervada con

borde lobulado a crenulado (fma. cymba-

laria), o profundamentde 3-5-lobulada

con base cordada y segmentos obtusos

(fma. exilis (Phil.) Lourt.). Flores soli-

tarias o en cimas paucifloras, largamen-

te pedunculadas, pedúnculos pubescen-

tes; sépalos amarillentos; pétalos amari-

los, brillantes, céreos, muy numerosos;

ginóforo cilíndrico-cónico, pubescente.

Aquenios tenuemente reticulados. Habita

en las vegas altoandinas y en áreas pan-

tanosas a menores alturas; abundante

sobre los 3000 m. LG: 2250-3600 m. N's.

81547 (fma. cymbalaria), 83/92, 83506,

83528 (fma. exilis).

Ranunculus uniflorus Phil ex

Reiche fma. uniflorus, Anales Univ. Chi-

le 88: 58. 1894.

Hierba perenne estolonífera, con

raíces fibrosas muy ramificadas, y entre-

nudos largos. Pecíolos gruesos, en-

sanchados en vainas, con pelos largos

adpresos, caducos; lámina aovada a su-

borbicular, glabra, obtusa, con borde en-

tero o a veces ondulado y base truncada.

Flores solitarias, erguidas; sépalos ama-

rillentos; pétalos amarillos, brillantes;

estambres y carpelos muy numerosos;

ginóforo ovoideo, piloso. Muy escasa en

las vegas altoandinas en Quebrada Can-

tarito. Constituye un nuevo límite norte

para la forma en Chile. Previamente ci-

tada hasta la Cordillera de Curicó. LG:

3150-3500 m.

Kalin Arroyo et al.

30

RHAMNACEAE

Discaria trinervis (Gill. ex H. et A.)

Reiche, Anales Univ. Chile 97: 50. 1897.

Arbusto alto o árbol de hasta 3.5 m de

altura; tronco grueso, de hasta 80 cm de

diámetro en individuos viejos. Ramas

largas, flexibles, las laterales termina-

das en espina rígida. Hojas glabras,

lanceolado-oblongas, trinervadas,

mucronadas. Flores pequeñas, aglome-

radas en las axilas de las hojas; corola

blanca; fruto tricoco. Crece en las orillas

de los ríos en las partes inferiores de am-

bas cuencas. LG: 1850-2650 m; LC: 2100

m; RT: 1850-2650 m. N”* 83368.

ROSACEAE

Acaena magellanica (Lam.) Vahl,

Enum. Pl. 1: 297. 1804.

Hierba perenne rizomatosa, de hasta

20 cm de altura. Tallos ramificados,

rastreros, decumbentes. Hojas pinadas,

verde-glaucas, con pubescencia serícea;

pínulas obovadas, inciso-crenadas. Ra-

ma florífera terminal. Inflorescencia una

cabezuela esférica; frutos con 3-4 aguijo-

nes pajizos o rojizos terminados en glo-

quidios. En lugares húmedos a orillas de

los cursos de agua. Entre las Papas y

Potrero de Toledo, cuenca de Río Laguna

Grande. LG: 2000-2300 m N* 81544.

Tetraglochin alatum (Gill. ex Hook.)

O.K., Revis. Gen. Pl. 3(2): 81. 1898.

Arbusto erecto ramoso de hasta 35 cm

de altura. Ramas cubiertas por hojas al-

ternas envainadoras, pinadas; vaina la-

nosa; folíolos pequeños, revolutos,

glabros, mucronados, caedizos; raquis

viejos punzantes, transformados en espi-

nas recurvas. Flores axilares; frutos ala-

dos, con alas enteras, rojizas. Crece prin-

cipalmente en el matorral de Adesmia

sentis Phil. Constituye un nuevo record

septentrional para la especie en Chile.

LG: 2300 m; LC: 3000-3450 m; RT: 2300-

3450 m. N* 83612.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

RUBIACEAE

Cruckshanksia hymenodon H. et A.

var. hymenodon, Bot. Misc. 3: 361. 1833.

Hierba perenne densamente hirsuta,

plomiza, con raíz gruesa de la que nacen

numerosos tallos tendidos, ascendentes.

Hojas opuestas, enteras, oblongo-

lanceoladas, agudas, atenuadas en pe-

cíolo. Flores heterostílicas, sésiles entre

las hojas superiores; sépalos petaloideos,

venosos, dilatados en un limbo orbicular

membranoso, cordados o truncados, de

color blanco-amarillento hasta violáceo-

pálido; corola amarilla. En taludes ri-

piosos en ambas cuencas. LG: 2300-2900

m; LC: 2650 m; RT: 2300-2900 m. Ns.

81529, 81654, 83370, 83403, 8362).

Oreopolus macranthus (Phil.) Ri-

cardi, Gayana, Bot. 6: 14. 1963.

Hierba perenne heterostílica, laxa-

mente cespitosa con numerosos tallos

delgados que brotan anualmente de una

raíz profunda leñosa; todos los órganos

velloso-hirsutos. Hojas opuestas, estipu-

ladas, espatulado-oblongas, atenuadas en

el pecíolo, obtusas, algo carnosas,

glaucas. Flores apicales, sobrepasando

las hojas, de hasta 3 cm de largo; tubo de

la corola angosto, pubescente; lóbulos de

la corola amarillos, agudos, pubescentes

externamente; fruto una cápsula. Her-

mosa planta muy común en terrenos suel-

tos en la zona altoandina de ambas cuen-

cas. Hemos comprobado que esta especie

es definitivamente heterostílica (ver Ri-

cardi, 1963). LG: 3350-3800 m; LC: 3500-

3800 m; RT: 3350-3800 m. Ns. 81571-B,

81591, 81619, 81631, 83464, 83555.

SAXIFRAGACEAE

Escallonia angustifolia K. Presl var.

coquimbensis (Remy) Acev. et Kaus.,

Darwiniana 10: 222. 1953.

Arbusto hasta árbol pequeño aromáti-

co, de hasta 4 m de altura; tronco grueso

en los individuos viejos; ramas largas,

péndulas, angulosas, glandulosas y pube-

Kalin Arroyo et al.

31

rulas, formando una amplia copa hemis-

férica. Hojas oblongas hasta lanceoladas,

verde-amarillentas, coriaceas, ate-

nuadas, acuminadas, laxamente

glanduloso-punteadas; borde sinuoso-

denticulado. Inflorescencias laxas, col-

gantes, muy vistosas; flores blancas,

perfumadas. Fruto una cápsula. Muy fre-

cuente a lo largo de los ríos en el valle del

Río Laguna Grande entre la Junta de Va-

leriano y Quebrada Candelilla. LG: 1850-

2500 m. N9s. 83327, 83632.

SCROPHULARIACEAE

Agalinis linarioides (Cham. et

Schlecht.) D'Arcy, Ann. Missouri Bot.

Gard. 65: 770. 1978.

Hierba perenne, erecta, de hasta 60

cm de altura. Tallos ramosos, hojosos.

Hojas linear-lanceoladas, agudas,

glabras, algo ásperas. Flores en racimos

hojosos, peludas, vistosas, de color rojo-

vinoso. Crece en lugares húmedos, areno-

sos. RC: ca. 1600-1800 m; LC: 2000-2100

m; RT: ca. 1600-2100 m. Ns. 81691, 83621.

Calceolaria cf. kingii Phil., Anales

Univ. Chile 91: 149. 1895.

Hierba perenne con raíz leñosa, de

hasta 25 cm de altura. Hojas aglomera-

das en la base de los tallos, aovado-

lanceoladas, rugosas, con nervios promi-

nentes en el envés, hirsuto-glandulosas.

Tallos florales con tres pares de hojas sé-

siles casi enteras. Inflorescencia cimosa,

dicótoma, con una flor en la bifurcación,

las ramas ondeadas, con 7-8 pares de flo-

res; ramas de la inflorescencia, cálices y

cápsulas densamente estipitado-

glandulosas; corola desconocida. En el

matorral de Senecio johnstonianus

Cabr.; escasa. Observada únicamente en

la cuenca del Río Laguna Grande. LG:

ca. 1950-2800 m. N” 81524.

Calceolaria lepida Phil., Anales

Univ. Chile 91: 140. 1895.

Arbusto erecto, de hasta 35 cm de altu-

ra, ramoso, amarillento, densamente

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

glanduloso-pubescente. Hojas agrupadas

hacia la base de las ramas, aovado-

oblongas, finamente crenadas, ásperas,

rugosas y con nervios muy prominentes

en el envés. Tallos floríferos poco hojo-

sos; inflorescencia paniculado-cimosa;

flores amarillas. Crece en las laderas

inclinadas, apegada a las rocas. LG:

1850-2850 m; LC: 2900-2950 m; RT: 1850-

2950 m. Ns. 83329, 83359.

Calceolaria pinifolia Cav., Icon. 5:

26, lám. 442, fig. 2. 1799.

Hierba perenne en céspedes densos,

verde-amarillentos, de hasta 15 cm de al-

tura; hojas muy numerosas, agrupadas

en la base de los tallos, de hasta 7 cm de

largo, lineales, revolutas, curvadas en la

punta, glutinosas, glabras en el haz y den-

samente hirsutas en el envés. Tallo floral

bífido, con dos hojas en la bifurcación;

cada bifurcación terminada en una cima

de flores amarillas con labio inferior

alargado. Crece en la zona altoandina en

lugares húmedos, protegidos, frecuente-

mente entre rocas; común. LG: 3450-3800

m; LC: 3350-3600 m; RT: 3350-3800 m.

.N%S. 81599, 83457.

Calceolaria sp.

Hierba perenne hirsuta y glanduloso-

pubescente de hasta 50 cm de altura.

Tallos huecos; hojas inferiores descono-

cidas, las superiores dispuestas a lo largo

de los tallos, pecioladas o, las superiores,

sésiles, irregularmente dentadas, arru-

gadas, con nervios prominentes. Flores

amarillas. Crece entre rocas; escasa. Co-

lectada entre Potrero de Toledo y

Quebrada Candelilla. LG: ca. 2600 m. N*

81536.

Mimulus depressus Phil., Viage Des.

Atacama 219. 1860.

Hierba perenne, rizomatosa, Casi

acaule. Hojas en roseta, anchamente

aovadas, groseramente serradas,

glabras o con algunos pelos dispersos.

Flores grandes, generalmente hasta 4

por roseta, cortamente pedunculadas;

Kalin Arroyo et al.

32

bada;

corola amarilla con puntos rojos, peluda

por dentro. Común en las vegas altoandi.-

nas, cubriendo áreas extensas en la parte

superior del Río Laguna Grande y en

Quebrada Cantarito. LG: 2850-3800 m;

Ns. 81640, 83433.

Mimulus glabratus H.B.K. var. par-

viflorus (Lindl.) A. Grant, Ann. Missouri

Bot. Gard. 11: 194. 1924.

Hierba perenne, casi glabra, con tallo

tendido radicante y ramitas ascendentes

de hasta 10 cm de largo. Hojas opuestas,

pecioladas o, las superiores, casi sésiles,

irregularmente dentadas. Flores pe-

queñas, axilares, largamente peduncula-

das, amarillo-pálidas con algunos puntos

rojos. En las vegas andinas y lugares

pantanosos. Escasa en la cuenca del Río

Laguna Grande. LG: 1800-2850 m.

Mimulus luteus L., Sp. Pl., ed. 2, 884.

1763.

Hierba perenne, glabra, con varios

tallos derechos o ascendentes, radican-

tes. Hojas aovado-lanceoladas, opuestas,

las inferiores cortamente pecioladas, las

superiores sésiles. Flores axilares hacia

el extremo de los tallos, grandes, ama-

rillas pintadas de rojo. Crece en el mismo

hábitat que la especie anterior. LG: 2700-

2850 m.

Veronica anagallis-aquatica L., Sp.

PIAIZiTOS:

Hierba anual (?), semi-acuática, erec-

ta, glabra, con tallos angulosos Hojas del-

gadas, verde-claras, sésiles, algo ample-

xicaules, lenceoladas, agudas; bordes fi.-

namente dentados a enteros. Flores pe-

queñas, en racimos axilares; corola cae-

diza, celeste, con los nervios más obscu-

ros y centro blanco. Cápsula apenas bilo-

valvas bífidas. Crece exclusiva-

mente en los bordes de los cursos de

agua. Vista solamente entre la Junta de

Valeriano y en la vecindad de Las Papas.

Muy variable en tamaño; especie intro-

ducida. LG: 1800-2300 m.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

SOLANACEAE

Fabiana imbricata R.et P., Fl. Pe-

uv: Chil. 2: 12, lám. 122. 1799.

Arbusto aromático de hasta 2 m de al-

tura, erecto muy ramoso, glutinoso,

glabro. Ramas amarillas, las viejas ci-

catricosas. Hojas pequeñas muy numero-

sas, atejadas, escamiformes. cubriendo

totalmente las ramitas secundarias. Flo-

res solitarias hacia el extremo de las ra-

mitas, blanco-amarillentas hasta azule-

jas. Crece preferentemente cerca de las

orillas de los ríos; abundante, formando

matorrales densos. LG. 2450-3450 m; LC:

2100-3350 m; RT: 2100-3450 m. N's. 81556-

83375.

Fabiana viscosa H. et A., Bot.

Beechey Voy. 36. 1830.

Arbusto erecto, muy ramoso, de hasta

1.5 m de altura. Ramas viejas cicatrico-

sas con la corteza partida. Hojas muy nu-

merosas, pequeñas, lineales o algo espa-

tuladas, casi cilíndricas, barnizadas, pe-

gajosas, pubérulas. Flores solitarias en

el extremo de las ramitas, glanduloso-

pubérulas; corola amarilla. Habita en

ambas cuencas en el matorral de Senecio

johnstonianus Cabr. LG: 1850-2500 m;

LC: 2150-2300 m; RT: 1850-2300 m. N%s.

81668, 83318.

Jaborosa caulescens Gill. et Hook.,

Bot. Misc. 1: 347, lám. 71, 1830.

Hierba perenne prostrada, glabra, de

hasta 40 cm de diámetro, con varios

tallos tendidos. Hojas arrosetadas hacia

el extremo de los tallos con nervadura

evidente, pinatisectas; segmentos 5-6 pa-

res, espinuloso-dentados. Flores pe-

queñas, axilares, pedunculadas, tubulo-

sas, verdosas; fruto una baya esférica,

verdosa. Crece en suelos arenosos,

pobres, lavados, en la parte superior de

la cuenca del Río Laguna Grande y de

Quebrada Cantarito. LG: 2900-3900 m.

Ns. 83/20-83569.

Kalin Arroyo et al.

33

Lycium minutifolium Remy in Gay,

F1. Chil. 5: 93. 1849.

Arbusto erecto de hasta 1 m de altura,

muy ramificado, pardo-amarillento. Ra-

mas muy tiesas, terminadas en espina y

cubiertas de espinas pequeñas. Hojas fas-

ciculadas, pequeñas, obovadas,

glanduloso-pubérulas. Flores solitarias,

blancas; frutos rojos. Crece en el ma-

torral de Senecio johnstonianus Cabr. en

ambas cuencas. LG: 1800-2350 m; LC:

2000-2150 m; RT: 1800-2350 m. N's. 81655,

83332.

Lycium rachidocladum Dunal in

DC. Prode:113:(1):4519,1852:

Arbusto ramoso, difuso, grisáceo, de

hasta 30 cm de altura. Ramas termina-

das en espina, las nuevas pubescentes y

glandulosas. Hojas pequeñas, espatula-

das, caducas, glanduloso-pubescentes.

Flores solitarias sobre las ramitas; coro-

la blanquecina, glabra. En el matorral de

Senecio johnstonianus Cabr. en el área de

la Junta de Valeriano y Las Papas. LG:

1800-2100 m.

Lycium vergarae Phil., Anales Mus.

Nac. Chile, Secc. 2, 8: 67. 1891.

Subasbusto leñoso, prostrado o ascen-

dente, raramente de hasta 10 cm de altu-

ra, cortamente pubescente; pelos ramifi-

cados. Ramificaciones terminadas en es-

pina. Hojas fasciculadas, aovadas, den-

samente pubescentes. Flores solitarias,

probablemente de color blanco-verdoso.

Crece desde el matorral de Adesmia sen-

tis Phil. hasta la zona subnival; escaso.

Observado únicamente en Quebrada de

Cantarito. Esta cita extiende el límite

distribucional sur de la especie en Chile.

LG: 3350- ca. 3800 m. N” 81616.

Nicotiana acuminata (Graham)

Hook., Bot. Mag. 56: lám. 2919. 1829.

Hierba anual erecta, poco ramificada,

de hasta 80 cm de altura; tallos viscidos,

densamente cubiertos con pelos cortos,

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

glandulosos. Hojas radicales aovadas,

acuminadas, pubérulas en ambas caras;

pecíolos tan largos como las láminas; ho-

jas caulinares más angostas y cortas.

Flores vespertinas, con tubo largo, de

hasta 5 em, dispuestas en racimos falsos

o panículas; cáliz viscoso, con nervios

evidentes, muy obscuros; corola blanca

por dentro, algo verde por fuera, de hasta

2 cm de diámetro. Cápsula ovoide. Crece

preferentemente en suelos alterados y en

taludes arenosos; evidentemente de cre-

cimiento muy rápido y polinizada noctur-

namente. LG: 1800-2800 m; LC: 2050 m;

RT: 1800-2800 m. Ns. 81508, 83363.

Nicotiana corymbosa Remy var.

corymbosa, in Gay, Fl. Chil. 5: 57. 1849.

Hierba anual pegajosa, de hasta 25 cm

de altura, con uno o varios tallos erectos o

ascendentes. Hojas radicales arroseta-

das, elípticas a oblongo-lanceoladas, ob-

tusas a acuminadas; hojas caulinares

distantes, más cortas y angostas. Flores

pequeñas, verpertinas, dispuestas en ci-

mas de glomérulos o fascículos brac-

teados; cáliz de hasta 6 mm de diámetro,

con nervios evidentes; corola de hasta 12

mm de largo, viscida, lóbulos emargina-

dos, de color blanco-sucio; estambres

inclusos. Cápsula elíptica a ovoide-

elíptica. Localmente común en sitios

abiertos con suelos arenosos en ambas

cuencas, desde la Junta de Valeriano has-

ta la zona subnival. Evidentemente es po-

linizada nocturnamente. LG: 1800-3850

m; LC: 3350-3650 m; RT: 1800-3850 m. N*

831/07.

Phrodus microphyllus (Miers)

Miers, Ann. Mag. Nat. Hist., ser. 2, 4: 33.

1849,

Arbusto ramoso de hasta 35 cm de al.-

tura. Ramas con corteza algo partida, de

color pardo claro, las nuevas glandulo-

sas. Hojas pequeñas, fasciculadas, sési-

les, linear-espatuladas, glanduloso-

pubescentes. Flores grandes, solitarias,

péndulas; cáliz anchamente acampana-

do; corola blanco-verdosa, estriada. Ha-

bita únicamente en el margen desértico

Kalin Arroyo et al.

34

en la cuenca del Río Conay y el área de la

Junta de Valeriano. LG: 1800-1950 m. N*

8166).

Reyesia parviflora (Phil.) Hunz.,

Kurtziana 10: 46. 1977.

Hierba anual glandulosa, erecta, con

algunos pelos blancos esparcidos, de has-

ta 40 cm de altura; tallos principales ra-

mificados; raíz profunda. Hojas radica-

les arrosetadas, oblanceoladas a obova-

das, obtusas a agudas, con borde irregu-

larmente sinuoso-dentado; hojas caulina-

res muy reducidas, escuamiformes, sési.-

les. Inflorescencia ramificada, muy difu-

sa; flores pequeñas, delicadas, zigomor-

fas; cáliz glanduloso; corola amarilla;

fruto capsular. Localmente común en

ambas cuencas en el matorral de Senecio

johnstonianus Cabr. y de Haplopappus

baylahuen Remy. Crece preferentemente

en taludes ripiosos. LG: 1800-3100 m; LC:

2050-2500 m; RT: 1800-3100 m. Ns. 81562.

83312, 83/06.

Schizanthus integrifolius Phil.,

Anales Univ. Chile 43: 530. 1873.

Hierba anual erecta, robusta, de hasta

75 cm de altura, aromática y pegajosa,

muy glandulosa. Hojas angostamente

elípticas, enteras, con nervadura promi-

nente. hirsutas y glandulosas. Inflores-

cencia en panícula con las ramas gene-

ralmente dirigidas hacia el mismo lado y

las flores erectas. Corola blanca con tubo

largo y angosto, arqueado; limbo laci-

niado. Crece en taludes ripiosos o areno-

sos; localmente distribuida; en ambas

cuencas. LG: 2050-2750 m; LC: 2050 m;

RT: 2050-2750 m. N“s. 81519, 81685, 8339).

Solanum elaeagnifolium Cav. var.

leprosum (Ort.) Dunal in DC., Prodr 13

(EZ Boa:

Subarbusto rizomatoso, de hasta 35

cm de altura, erecto hasta prostrado, es-

pinoso, densamente cubierto de pelos

estrellados blancos; espinas glabras,

amarillentas. Hojas oblongo-lan-

ceoladas, sinuadas. Flores solitarias o de

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

a pares, opuestas a las hojas superiores;

corola rotácea, blanco hasta violácea,

estrellado-pubescente por fuera; bayas

amarillas, lustrosas. Coloniza áreas are-

nosas alteradas; localmente común en

las partes inferiores de ambas cuencas.

LG: 1800-2100 m; LC: 2000-2250 m; RT:

1800-2250 m. N” 81666.

Trechonaetes laciniata Miers, Lon-

don J. Bot. 4: 350. 1845.

Hierba perenne prostrada, casi glabra

o con algunos pelos blancos en las hojas y

flores. Hojas arrosetadas, pinatifidas,

con los segmentos dentados y los dientes

espinulosos. Flores entre los hojas; coro-

la anchamente campanulada, violáceo-

oscura, más clara en el margen de las di-

visiones; bayas globosas. Crece prefe-

rentemente en los bordes de las vegas al-

toandinas. Coleccionadas en la Quebrada

de Cantarito. Nuevo récord norte para es-

ta especie. LG: 3250-3800 m. Ns. 81631,

83548.

UMBELLIFERAE

Apium andinum Phil., Anales Univ.

Chile 85: 717. 1894.

Hierba perenne aromática erecta,

glabra, de hasta 25 cm de altura; hojas

pinadas con segmentos tripartidos,

aserrados; flores blancas, en umbelas

axilares y terminales. En los bordes de

los cursos de agua de las vegas. Colecta-

da en la cuenca del río Laguna Grande

entre Potrero de Toledo y Quebrada Can-

delilla. LG: ca. 2400-2800 m. N?* 81516.

Apium leptophyllum (Pers.) F.

Muell. ex Benth., Fl. Austral. 3: 371. 1867.

Hierba anual (?), erecta o ascendente,

de hasta 35 cm de altura; glabra. Tallos

estriados. Hojas de contorno oblongo-

deltoideo, ternado-pinado-descom-

puestas, con los segmentos lineales. Flo-

res blancas, en umbelas multifloras, pe-

queñas. Frutos orbiculares, costados. En

suelos húmedos en los bordes de los ríos.

Unicamente observada en la Junta de Va-

leriano. LG: 1800 m. N* 83301.

Kalin Arroyo et al.

35

Asteriscium chilense Cham. et

Schlecht., Linnaea 1: 254., lám. 5. 1826.

Hierba perenne glabra, glauca, erec-

ta, de hasta 40 cm de altura; hojas subco-

riáceas, orbiculares a reniformes, mar-

gen cartilaginoso, espinoso-dentado; pe-

cíolos delgados, ensanchados en la base.

Pedúnculos erectos; umbelas de hasta 2.5

cm de diámetro; flores verde-cremosas.

Frutos oval-oblongos, 4-alados. Frecuen-

te en el matorral de Senecio johnsto-

nianus Cabr. en el valle del Río Laguna

Grande, entre la Junta de Valeriano y

Potrero de Toledo. LG: 1850-2450 m. N's.

81659, 83501.

Azorella madreporica Clos in Gay,

Fl. Chil. 3: 79. 1848.

Planta resinosa formando cojines du-

ros y apretados, grandes, con tallos sub-

terráneos, leñosos, partidos en muchas

ramas cortas, cubiertas en su parte infe-

rior por las vainas de las hojas viejas. Ho-

jas con pecíolos anchos, membranosos;

lámina trífida con divisiones cortas, obtu-

sas; cara superior densamente cubierta

con pelos blancos largos. Flores verde-

amarillentas, en umbelas sésiles,

paucifloras, entre las hojas; mericarpios

pequeños, verde-amarillentos. Muy esca-

sa en la zona; colectada solamente en el

Portezuelo Vizcachas cerca del límite su-

perior de la vegetación. Constituye un

nuevo límite septentrional para la espe-

cie en Chile. LG: ca. 4000 m. N” 83583-B.

Azorella trifoliolata Clos var. de-

pauperata (Phil.) Reiche, Anales Univ.

Chile 104: 787. 1899.

Hierba perenne, rizomatosa; hojas

dispuestas en rosetas radicales laxas, de

hasta 5 cm de diámetro; pecíolos largos,

dilatados en una base membranosa, en-

vainadora; lámina trífida, con los seg-

mentos partidos. Flores dispuestas en

umbelas sésiles, paucifloras, más cortas

que las hojas; pétalos de color crema;

mericarpios comprimidos. Crece exclusi-

vamente en las vegas altoandinas junto

con Scirpus atacamensis (Phil.) Boeck.,

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

S. deserticola Phil., Werneria pygmaea

Gill. ex H. et A. y Patosia clandestina

(Phil.) Buch.; muy abundante en las ve-

gas al NE de Quebrada Candelilla. LG:

2800-3200 m. N* 83412.

Gymnophyton flexuosum Clos in

Gay, Fl. Chil. 3: 104. 1848.

Arbusto casi afilo, con ramas fle-

Xuosas, espinescentes, intrincadas, cos-

tadas, fotosintéticas, de hasta 25 cm de

altura; hojas caulinares inferiores esca-

sas, pequeñas, caedizas, linear-

filiformes, enteras, muy distantes en el

tallo. Flores pequeñas, verde-

amarillentas, dispuestas en racimos ter-

minales o en umbelas compuestas, laxas.

Fruto seco, 4-alado. Crece preferente-

mente en taludes rocosos en el área del

matorral de Senecio johnstonianus Cabr.

en ambas cuencas y en las laderas roco-

sas en el valle del Río Conay, LG: 1800-

2150 m; LC: 2000-2250 m; RT: 1800-2250

m. Ns. 83602, 83647.

Gymnophyton robustum Clos in

Gay, Fl Chil. 3: 104. 1848.

Arbusto muy robusto, casi afilo, de

hasta 1.8 m de altura, con tallos muy

erectos, fotosintéticos, verde-claros, a

veces espinescentes, prominentemente

angulosos y costados. Hojas caulinares li-

neales, esteras. Flores verde-

amarillentas, dispuestas en racimos o

umbelas laxas, compuestas, terminales.

Frutos orbiculares a obovados, 4-alados.

Muy común en laderas inclinadas roco-

sas en las dos cuencas, en el área del ma-

torral de Senecio johnstonianus Cabr.

Frecuentemente crece en conjunto con

Ephedra breana Phil. LG: 1850-2500 m;

LC: 2000-2350 m; RT: 1850-2500 m. Ns.

81673, 83328, 83336.

Homalocarpus dichotomus (Poepp.

ex DC.) Math. et Const., Univ. Calif.

Publ. Bot. 38: 63, fig. 28. 1965.

Hierba anual tomentosa, cubierta de

pelos estrellados, prostrada o con tallos

ascendentes, de hasta 15 cm de altura.

Kalin Arroyo et al.

36

Hojas radicales oblongas o obovadas, ob-

tusas, cuneadas en la base, enteras, con

3-4 pares de dientes anchos, poco profun-

dos; peciolo más largo que la lámina.

Flores pequeñas, blancas a rosadas, en

umbelas laxas; fruto 4-angulado. Local-

mente distribuida en suelos arenosos y en

laderas ripiosas en ambas cuencas. LG:

1800-2100 m; LC: 2000-2950 m; RT: 1800-

2950 m. Ns. 8331), 83610.

Laretia acaulis (Cav.) Gill. et Hook.,

Bot. Misc. 1: 329, lám. 65. 1830.

Especie leñosa, dioica, formando coji-

nes compactos elevados, muy duros y re-

sinosos, de hasta 70 cm de altura, con ra-

mas subterráneas y raíces gruesas. Ho-

jas arrosetadas en los extremos de las ra-

mas, sésiles, glabras, aovado-

lanceoladas, crasas, agudas, recurvas.

Inflorescencia de los individuos masculi-

nos pediceladas, sobrepasando las hojas,

las de los individuos femeninos sésiles

entre las hojas; flores amarillo-

verdosas; ovario alado, rojizo; mericar-

pios secos, alados. Especies muy escasa

en la zona; algunos individuos aislados

observados en Quebrada Cantarito, cerca

de Quebrada Marancel. Constituye un

nuevo récord septentrional para la espe-

cie en Chile. LG: 3450-3700 m. N's. 81647,

83/65.

Lilaeopsis andina A.W. Hill, J. Linn.

Soc., Bot. 47: 540. lám. 20. fig. 3. 1927.

Hierba acuática perenne, de hasta 8

cm de altura, rizomatosa, acaule. Rizo-

ma largo, radicante. Hojas lineales, fistu-

losas, septadas, glabras. Umbelas más

cortas que las hojas; flores muy pe-

queñas, blancas. Habita en las vegas an-

dinas; localmente común. LG: 2800-3400

m. N?s. 81558, 83481.

Mulinum cryptanthum Clos in Gay,

Fl. Chil. 3: 90. 1848.

Planta perenne, en cojines bajos apre-

tados o algo laxos, de hasta 60 cm de

diámetro; tallos ramificados, cortos, de

hasta 5 cm de altura; ramas cubiertas

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

por las vainas blanquizcas de las hojas;

láminas lineales, aleznadas, tiesas, muy

punzantes, de color verde-claro. Umbelas

sésiles entre las hojas, paucifloras; flores

amarillo-verdosas; frutos ovalados, no

alados. Habita en los bordes de las vegas

altoandinas. Hojas de largo variable.

Frecuente en la Quebrada Cantarito y en

el Portezuelo Vizcachas. LG: 3300-3950

m. N's. 81598, 83443, 83477, 83516, 83559,

83581.

Mulinum spinosum (Cav.)

Syn. Pl. 1: 309. 1805.

Pers.,

Arbusto dioico muy ramoso, formando

matas globosas de hasta 15 cm de altura;

hojas envainadoras, las vainas pestaño-

sas cubriendo los tallos; láminas diver-

gentes, tiesas, trífidas, con pubescencia

blanca crespa; divisiones aleznadas, ter-

minadas en espina; umbelas sobre pe-

dúnculos que sobrepasan las hojas; flores

amarillentas; frutos de contorno aovado,

alados, teñidos de morado. En el ma-

torral de Haplopappus baylahuen Remy

en Quebrada Yerba Buena. Muy local. Es

un nuevo récord norte para la especie en

Chile. LC: 3000-3150 m. N”* 83613-4.

URTICACEAE

Urtica pseudo-dioica Steud., Flora

335.297. 1850.

Hierba dioica o raramente monoica,

erecta, de hasta 1.20 m de altura, con pu-

bescencia simple y de pelos urticantes.

Tallo único, estriado. Hojas opuestas,

aovado-lanceoladas, aserradas, agudas.

Flores en racimos de glomérulos en las

axilas de las hojas. Esporádicamente

distribuida a lo largo de los ríos. Se obser-

vó en las cuencas del Río Laguna Grande

y de la Quebrada Cantarito. LG: 1800-3400

m.

VALERIANACEAE

Valeriana stricta Clos in Gay, Fl.

Chil. 3: 235. 1848.

Sufrútice glauco, hirsuto, dioico, con

numerosos tallos rectos, de hasta 75 cm

Kalin Arroyo et al.

37

de altura. Hojas opuestas, agrupadas en

la base de los tallos; pecíolos cortos, en-

sanchados en la base, pubescentes; lámi-

na bipinatisecta, lóbulos muy irregula-

res; hojas superiores más cortas que las

inferiores. Inflorescencia axilares y ter-

minales, densamente ramificadas; ejes

amarillos; flores zigomorfas, muy pe-

queñas; pétalos blancos. Fruto con vilano

de hasta 3 mm de largo. Crece entre ro-

cas; observado únicamente en la cuenca

del Río Laguna Grande, entre Las Papas

y Potrero de Toledo. Nuevo récord norte

para esta especie. LG: 2300-2650 m. Ns.

81501, 83378, 83395.

Valeriana vaga Clos in Gay, Fl. Chil.

3: 227. 1848.

Hierba perenne glabra con follaje de

color verde-claro, de hasta 50 cm de altu-

ra; tallos estriados; hojas pinatifidas,

crasas, segmentos obovados a oblongos,

dentados a enteros. Inflorescencias axila-

res y terminales, laxas; flores zigomor-

fas, pequeñas, blancas. Fruto con vilano.

Crece entre rocas; observada una sola

vez entre Quebrada Candelilla y Laguna

Grande. Un nuevo récord septentrional

para la especie. LG: 2900 m. N* 81540.

VERBENACEAE

Aloysia salviaefolia (H. et A.) Mold.,

Lilloa 5: 381. 1940.

Arbusto aromático de hasta 40 cm de

altura, ceniciento; ramas viejas con cor-

teza de color pardo-amarillento, partida;

ramas nuevas tomentosas. Hojas aovado-

lanceoladas, con algunos dientes gruesos

hacia el extremo, glandulosas en el en-

vés, esparcidamente hirsutas en el haz.

Flores blancas, en espigas largas, den-

sas. Planta del margen desértico. LG:

ca. 1800 m.

Glandularia origenes (Phil.) Sch-

nack et Covas, Darwiniana 6: 475. 1944.

Arbusto de hasta 50 cm de altura,

erecto o algo ascendente, ramoso, densa-

mente hirsuto y glanduloso; hojas sési-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

les, revolutas, romboidalesa, trífidas,

con los segmentos dentados, mucrona-

dos; inflorescencias terminales forma-

das por varias cabezuelas espiciformes;

flores blancas con tubo algo rojizo. En la-

deras inclinadas, rocosas, entre la Junta

de Valeriano y Las Papas. LG: 1850-2050

m. N9s. 81543, 81653, 83326.

Juniella asparagoides (Gill. et.

Hook.) Mold., Lilloa 5: 393. 1940.

Arbusto erecto de hasta 40 cm de altu-

ra, hirsuto-glanduloso; ramas viejas con

corteza amarillenta, partida; hojas

tiesas, verde-oscuras, trífidas, con las di-

visiones terminadas en espina recia y con

fascículos de hojas espatuladas, no o poco

espinosas, en las axilas. Inflorescencia

en espiga terminal con brácteas punzan-

tes; flores lila-pálidas. Común en el ma-

torral de Adesmia sentis Phil. en ambos

lados del Portezuelo Yerba Buena. LC:

2650-3450 m. Ns. 83595, 83603.

Junellia caespitosa (Gill. et Hook.)

Mold., Lilloa 5: 394. 1940.

Subarbusto en cojín laxo; raíz gruesa;

tallos cortos, leñosos; hojas pequeñas,

gruesas, recurvas, aquilladas, cubiertas

de pelos tiesos recostados blancos, las

viejas convertidas en espinas, las más

nuevas mucronadas; flores sésiles en el

extremo de las ramas; corola blanca a

rosada, hasta azul-pálida. Común en la

zona altoandina, en lugares de deshielo.

Observado en la parte superior de la

Quebrada Cantarito. LG: 3350-3800 m.

Ns. 81617, 83497.

Junellia erinacea (Gill. et Hook.)

Mold., Lilloa 5: 396. 1940.

Muy parecida a la especie anterior,

pero todas las hojas terminadas en espi-

na, las viejas convertidas en espinas cas-

tañas; flores blanco-rosadas. En el mis-

mo hábitat. LG: ca. 3500-4300 m. N* 81627.

Junellia uniflora (Phil.) Mold.,

Lilloa 5: 403. 1940.

Semejante en habito a Junellia caespi-

tosa (Gill. et Hook.) Mold., pero las hojas

Kalin Arroyo et al.

38

más pequeñas, angostamente elípticas,

obtusas, con el nervio medio prominente

y margen algo revoluto, híspidas con pe-

los patentes. Flores sésiles rosadas. Ha-

bita en la zona altoandina hasta cerca del

límite superior de la vegetación. LG:

3700-4000 m. N's. 81603, 83478.

Verbena bonariensis L., Sp. Pl. 20.

SS:

Hierba anual (?) erecta, de hasta 50

cm de altura. Tallos y ramas cuadrangu-

lares, híspidos, ásperos. Hojas sésiles,

opuestas, lanceoladas, inciso-serradas.

Flores en espigas terminales densas,

violáceas a purpúreas. Crece en suelos

arenosos en los bordes de los ríos; nor-

malmente en lugares alterados. Observa-

da entre la Junta de Valeriano y Las Pa-

pas. LG: 1800-2050 m. N%s. 83302, 83333.

VIOLACEAE

Viola frigida Phil., Viage Des. Ataca-

ma 183. 1860.

Hierba anual arrosetada; roseta de

hasta 4 cm. de diámetro; hojas elípticas,

atenuadas en pecíolo largo, cortamente

pubescentes, arrugadas, con pelos glan-

dulosos lineares por debajo, margen si-

nuado. Flores zigomorfas, axilares; pe-

dúnculos tan largos como las hojas; coro-

la de color lila-pálido hasta blanco con

estrías más obscuras. Muy común en

suelos arenosos desde la zona subandina

hasta la zona subnival. Las plantas indi-

viduales son muy variables en tamaño,

así también el color de los pétalos. Se mi.-

metiza con el substrato. LG: 2350-3800 m.

Ns. 81571-A, 81584, 81613, 81632, 83127,

83472, 83572, 83577.

Viola montagnei Gay, Fl. Chil. 1: 222.

1846.

Hierba perenne compuesta de una o

varias rosetas apretadas, de hasta 6 cm

de diámetro cada una; hojas espatula-

das, reticulado-arrugadas, cortamente

pubescentes y con glándulas alargadas

de color pardo en el envés. Flores zigo-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

morfas, axilares, los pedúnculos del mis-

mo largo que las hojas; corola pequeña,

de color púrpura-oscuro; garganta ama-

rilla. Fruto una cápsula con pocas se-

millas. Crece exclusivamente en los talu-

des inclinados en la zona subnival, junto

con Pachylaena atriplicifolia D. Don ex

H. et A., y Oreopolus macranthus (Phil.)

Ricardi. Observada únicamente en el

Portezuelo Vizcachas, cerca del límite

superior de las vegetación. Nuevo récord

septentrional para esta especie. LG:

3750-3800 m. N* 83571.

VIVIANIACEAE

Viviania marifolia Cav., Anales Ci.

Nat. 7: 212. lám 49. 1804.

Arbusto ramoso, erecto, de hasta 75

cm de altura; tallos hirsutos, plomizos

hasta ferrugíneos; hojas pequeñas,

opuestas, subcordadas, enteras hasta

crenuladas, agudas, verde y pilosas en el

haz, plomizas, densamente lanosas y con

nervadura palmada muy evidente en el

envés. Flores muy vistosas, en cimas ter-

minales muy abiertas; pétalos de color

rosado-intenso hasta blanco con la edad.

Fruto una cápsula coriacea, hirsuta. Her-

moso arbusto, muy abundante a lo largo

de ambas cuencas en laderas inclinadas

arenosas. LG: 1900-3550 m; LC: 2700-3500

m; RT: 1900-3550 m. N%s. 81528, 83357,

83/21, 83599.

ZYGOPHYLLACEAE

Bulnesia chilensis Gay, Fl. Chil. 1:

475. 1846.

Arbusto erecto, ramificado, difuso, de

hasta 1 m de altura; ramas cilíndricas,

articuladas, las viejas glabrescentes y

cubiertas por cera blanco-plomiza, las

más nuevas cerosas y pubescentes; hojas

pinadas, con 3-5 pares de folíolos elípticos

aproximados, pubescentes, caedizas; flo-

res amarillas, generalmente solitarias en

las axilas de las hojas. Frutos alados.

Crece en el margen desértico en la cuen-

ca del Río Conay. RC: ca. 1600-1800 m. N*

81683.

Kalin Arroyo et al.

3:9

Larrea nitida Cav., Anales Ci. Nat. 2:

120, lám. 18. 1800.

Arbusto ramoso, verde amarillento,

de hasta 2 m de altura. Ramas articula-

das, las viejas con corteza parda,

glabras; las nuevas y las hojas cortamen-

te pubescentes, barnizadas; hojas opues-

tas, pinadas, con ca. 6 pares de folíolos

oblongos, muy aproximados. Flores soli-

tarias, amarillas; frutos esferoidales,

5-lobulados, pubescentes. En quebradas

en la parte inferior del río Laguna Gran-

de, de la Quebrada Yerba Buena y del Río

de Valeriano. LG: 1850 m; LC: 2050-2250

m; RT: 1850 2250 m. N%s. 83319, 8361).

ANGIOSPERMAE:

MONOCOTYLEDONEAE

AMARYLLIDACEAE

Alstroemeria andina Phil., Linnaea

29: 69. 1858.

Hierba glauca de hasta 15 cm de altu-

ra, con raíces tuberosas profundas y rizo-

ma largo, flexuoso. Tallos erguidos, muy

hojosos, glabros, algo violáceos. Hojas

carnosas, sésiles, oblanceoladas a espa-

tuladas, agudas, glabras o con algunos

pelos crespos en el envés. Flores umbela-

das, blancas hasta rosadas; tépalos supe-

riores con puntos de color morado-

oscuro. En laderas y taludes arenosos o

ripiosos, en asociación con Senna urme-

netae (Phil.) Irw. et Barneby y Argylia

potentillaefolia DC.; común en ambas

cuencas. Constituye un nuevo récord nor-

te para la especie. LG: 2050-2900 m; LC:

3550-3650 m; RT: 2050-3650 m. Ns. 83347,

83374, 83471, 83608.

Alstroemeria venustula Phil., Lin-

naea 33: 260. 1864.

Muy parecida a la especie anterior, de

la que se diferencia por tener las hojas

densamente cubiertas por pelos crespos,

especialmente en el envés. Crece en talu-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

des ripiosos; observada solamente en el

cajón del Río Conay, entre la Junta de

Valeriano y Quebrada Albaricoque. Esta

cita amplía el límite norte de la especie.

RC: ca. 1600-1800 m. N* 81672.

CYPERACEAE

Carex gayana Desv. var. densa

Kuek., Bot. Jahrb. Syst. 27: 501. 1899.

Hierba perenne con rizoma rastrero

grueso, raramente de hasta 15 cm de al.

tura. Hojas más cortas que el tallo. Espi-

guillas densamente agrupadas, casi

exclusivamente masculinas, de 1.5cm de

largo; estigmas 2. Muy común en las ve-

gas altoandinas: LG: 2400-3600 m. Ns.

83518, 83535.

Carex marítima Gunn. var. misera

(Phil.) Fern., Rhodora 35: 397. 1933.

Hierba perenne, pequeña, con rizoma

rastrero; tallos de igual longitud o más

cortos que las hojas; inflorescencia den-

sa, corta y ancha, de hasta 1 cm de largo;

estigmas 2. Común en las vegas altoandi-

nas de la Quebrada de Cantarito. LG:

3150-3800 m. N%s. 83/91, 83515, 83533.

Carex vallis-pulchrae Phil., Anales

Univ. Chile 93: 487. 1896.

Hierba perenne, grácil, con rizoma es-

tolonífero, formando céspedes, de hasta 5

cm de altura. Hojas lineales. Inflorescen-

cia pseudo-lateral, pauciflora, de ca. 5

mm de largo; estilo trífido. Localmente

común en vegas altoandinas, junto a Ele-

ocharis albibracteata Nees et Meyen ex

Kunth., y sus asociadas. El material

constituye un récord septentrional nuevo

para la especie. LG: 2850-3500 m. N?

83543.

Eleocharis albibracteata Nees et

Meyen ex Kunth, Enum. Pl. 2: 143. 1837.

Hierba perenne, grácil, cespitosa, con

rizoma estolonífero castaño-rojizo; tallos

filiformes de hasta 7 cm de altura; vaina

superior roja con boca oblicua, algo hen-

Kalin Arroyo et al.

40

dida por delante. Inflorescencia termi.-

nal, negra, de hasta 4 mm de largo; estilo

trífido. Común en las vegas altoandinas y

en los pantanos del Río Laguna Grande.

LG: 2400-3800 m. N9s. 83/93, 83536.

Eleocharis dombeyana Kunth,

Enum. Pl. 2: 145. 1837.

Hierba perenne estolonífera, cespito-

sa, de hasta 12 cm de altura; vaina supe-

rior rojiza con borde horizontal y un dien-

te en sulado dorsal. Inflorescencia termi.-

nal, café oscura, de ca. 0.8 cm de largo;

estilo trífido. Crece en vegas pantanosas

a orilla de los ríos; local. LG: 2250-2350

m; LC: 2150. m; RT: 2150 2350-"nSS

83372.

Eleocharis melanostachys (D'Urv.)

C.B. Clarke, Bot. Jahrb. Syst. 30, Beibl.

68: 20. 1901.

Hierba perenne con rizoma rastrero;

tallos de hasta 20 cm de altura; vaina su-

perior parda hasta casi verde, con boca

oblicua alargada en punta dorsal. Inflo-

rescencia parda, de 0.8 cm de largo; esti-

lo bífido. Localmente común en areas

pantanosas en el márgen de los ríos. LG:

1800-2100 m; LC: ca. 1800-2200 m; RT:

1800-2200 m. N* 83639.

Scirpus americanus Pers. ssp. mo-

nophyllus (J. et K. Presl) Koyama, Ca-

nad..J. Bot. 41: 1118, 1963:

Hierba perenne con rizoma rastrero

grueso; tallos de hasta 20 cm de altura,

trígonos; hojas superiores con láminas

de hasta 3.5 cm de largo. Inflorescencia

en capítulos de hasta 0.8 cm. de largo,

compuestos de 2-3 espiguillas de color ca-

fé. En áreas pantanosas y en vegas andi-

nas de alturas bajas. LG: 2300-2400 m.

N9s. 83354, 83373.

Scirpus asper J. et K. Presl, Rel.

Haenk. 1: 194. 1828.

Hierba perenne con rizoma descen-

dente. Tallos trígonos de hasta 20 cm de

altura. Hojas ásperas, subuladas, plega-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

das, de hasta 12 cm de largo. Inflorescen-

cia formada por varias espiguillas de co-

lor café claro, de 1 cm de largo, fascicula-

das, densas; estilo trífido. Crece en los

márgenes de vegas y especialmente en

vegas alteradas. LG: 2100-2700 m. N”

83640.

Scirpus atacamensis (Phil.) Boeck.,

Linnaea 36: 482. 1870.

Hierba perenne formando grandes co-

jines duros: parte inferior de los tallos

cubierta por las vainas viejas persisten-

tes; hojas tiesas, mucronadas, punzan-

tes, de hasta 2.5 cm de largo. Inflorescen-

cias terminales, de ca. 0.8 cm. de largo,

con las brácteas pajizas, brillantes; fru-

tos sin setas hipóginas; estilo trífido. Muy

común en las vegas altoandinas de la

Quebrada de Cantarito. LG: 2650-3600 m.

Ns. 83437-B, 83479, 83489, 83508, 83531.

Scirpus deserticola Phil., Viage

Des. Atacama 227. 1860.

Hierba perenne arrosetada formando

céspedes duros, planos, de color verde

claro. Hojas planas, más anchas hacia la

base, con los nervios muy evidentes.

Inflorescencia terminal sobre un escapo

corto, opaca, formada por 2-3 espiguillas,

de ca. 1 cm. de largo; setas hipóginas

presentes; estilo trífido. Común en las ve-

gas altoandinas de la Quebrada de Canta-

rito y en lugares pantanosos del Río La-

guna Grande. LG: 2150-3700 m. Ns.

83353-A. 83437-A, 83480, 83523, 83529.

GRAMINEAE

Bromus setifolius J. Presl var. bre-

vifolius Nees, Nov. Actorum Acad. Caes.

Leop.-Carol. Nat. Cur. 19, suppl. 1: 168.

1843.

Pasto perenne, cespitoso, de hasta 20

cm de altura, glauco, típicamente con

restos de hojas basales, Hojas anchas,

convolutas, cortamente pubescentes. Pa-

nojas contraídas, con pocas espiguillas

algo violáceas, de hasta 5 cm de largo;

glumas muy anchas, con borde escarioso.

Kalin Arroyo et al.

41

Crece en lugares abiertos de la zona alto-

andina en la subida E hacia el Portezuelo

Yerba Buena. LC: 3000-3500 m. Ns.

83589, 83600.

Bromus unioloides H.B.K., Nov.

Gen. Sp. 1: 151. 1816.

Planta perenne (?), laxa, decumben-

te, con tallos de hasta 1 m de largo; hojas

glaucas, planas. Panojas muy laxas, con

espiguillas distantes, verde grisáceas.

Crece preferentemente en lugares húme-

dos cerca de los ríos. LG: 1800-2650 m. N”*

83305-A.

Cortaderia speciosa (Nees et Me-

yen) Stapf, Gard. Chron., ser. 3, 22: 396.

1897.

Planta perenne robusta, formando

matas hemisféricas muy hojosas, con ca-

ñas florales de unos 2.5 m de altura; ho-

jas ásperas, los restos de las hojas viejas

persistentes. Panojas muy densas,

blanco-plateadas, plumosas. Muy común

a lo largo de los ríos. LG: 1900-3050 m;

LC: 2050-2100 m; RT: 1900-3050 m. N”

836142.

Deyeuxia eminens J. Presl, Rel.

Haenk. 1: 250. 1830.

Planta perenne, de hasta 60 em. de al.

tura, robusta, formando champas den-

sas. Hojas junciformes, glabras, ásperas,

amarillas. Panojas amplias, laxas, nu-

tantes, doradas, de 30 cm de largo. Crece

exclusivamente en los bordes y montícu-

los de las vegas altoandinas. LG: 3350-

3800 m.

Deyeuxia velutina Nees et Meyen,

Nov. Actorum Acad. Caes. Leop.-Carol.

Nat. Cur. 19, suppl. 1: 147. 1843.

Planta densamente cespitosa; cañas

delgadas, de hasta 30 cm de altura; tallos

jóvenes débilmente violáceos. Hojas muy

numerosas, rígidas, conduplicadas, pun-

zantes; haz pubescente y envés glabro y

brillante. Panojas de hasta 5cm de largo,

plateado-brillantes. Crece exclusivamen-

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

te en las partes elevadas de las vegas al-

toandinas; común. LG: 3400-3700 m. Ns.

83136, 83488, 83502, 83519, 83522.

Distichlis sp.

Planta perenne de aproximadamente

20 cm de altura, con rizomas viajeros.

Hojas dísticas, glabras, revolutas. Pano-

ja de ca 4 cm. de largo; espiguillas dísti-

cas. En lugares salinos húmedos y altera-

dos; escasa. LG: 2700-2750 m; LC: 2100

m; RT: 2100-2750 m. N* 83353-B.

Festuca hypsophila Phil., Anales

Mus. Nac. Chile, Secc. 2, 8: 89. 1891.

Pasto densamente cespitoso, brillan-

te. Cañas floríferas amarillentas, robus-

tas. Hojas plegadas, glabras en la cara

abaxial y pubescentes en la adaxial, con

vainas anchas purpúreas. Solamente se

observó un pequeño número de indivi-

duos estériles en una vega altoandina en

la Quebrada de Cantarito. LG: 3600 m. N”

83580.

Festuca werdermannii St.-Yves,

Candollea 3: 301, fig. 92. 1927.

Planta perenne amarillenta, glabra

hasta finalmente pubérula, de hasta 35

cm de altura, formando pequeñas cham-

pas. Hojas júnceas, tiesas, punzantes,

con vainas anchas de color pajizo. Pano-

jas de hasta 5 cm de largo, laxas; espi-

guillas distantes. Crece en el borde y en

montículos de las vegas altoandinas. LG:

3250-3800 m. N* 83505.

Hordeum comosum J. Presl, Rel.

Haenk. 1: 327. 1830.

Hierba perenne cespitosa, de hasta 25

cm de altura, cubierta en la base por

vainas foliares secas; hojas planas, pu-

bescentes, verde-grisáceas. Espigas

violáceas, de hasta 6 cm de largo y 1 cm

de ancho; ráquis frágil. Crece en suelos

secos en la zona altoandina; observada

sólo en la Quebrada de Cantarito. LG:

3100-3650 m. N* 83504.

Kalin Arroyo et al.

42

Hordeum santacrucense Parodi et

Nicora, Hickenia 1: 58, fig. 1. 1977.

Hierba perenne cespitosa, de hasta 20

cm de altura, con hojas filiformes curva-

das, claramente pilosas. Espigas más

cortas y más angostas que en la especie

anterior, de 1.8x 0.5 cm,violáceo-oscuras.

A diferencia de Hordeum comosum J.

Presl, esta especie crece en lugares pan-

tanosos a lo largo de los ríos y en las ve-

gas altoandinas. Conocida hasta ahora

sólo para Punta Arenas, XII Región y Pa-

tagonia argentina; esta cita amplía su

distribución en Chile. LG: 2350-3800 m.

Ns. 81648, 83520.

Muhlenbergia asperifolia (Nees et

Meyen ex Trin.) Parodi, Revista Fac.

Agron. Veterin. 6: 117. 1928.

Planta perenne con largos rizomas, de

hasta 20 cm. de altura; hojas dísticas,

glaucas. Panojas muy laxas, delicadas,

con pedicelos filiformes; espiguillas ge-

neralmente unifloras. Crece en terrenos

salobres y a veces en las vegas altoandi-

nas. LG: 2450 m; LC: 2800-3800 m; RT:

2450-3800 m. N” 83/14-B.

Pennisetum chilense (Desv.) Jack-

son ex R.E. Fries, Nova Acta Regiae Soc.

Sci. Upsal., ser 4, 1(1): 172. 1905.

Pasto perenne, glauco, robusto, de

hasta 1.20 m de altura, con rizomas

gruesos y duros. Hojas anchas, planas o

plegadas, de hasta 1 cm de ancho. Paní-

culas de hasta 15 cm de largo, angostas,

compactas; estigmas persistentes, violá-

ceos, conspicuos. Crece a orillas del cur-

so inferior del Río Laguna Grande. LG:

1800-2200 m. N* 83330.

Phragmites australis (Cav.) Trin. ex

Steud., Nom. Bot., ed 2, 2: 324. 1841.

Planta perenne robusta, de hasta 2.5

m de altura, con rizomas profundos. Lá-

minas foliares planas, con bordes áspe-

ros. Panoja muy densa, de hasta 20 cm de

largo por 7 cm de ancho, pajiza a violá-

cea. Especie cosmopolita. A orillas de los

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

ríos; escasa en la zona de estudio. LG:

2300 m.

Poa brevis Hitchc., aff., Contr. U.S.

Natl. Herb. 24: 328. 1921.

Hierba perenne, decumbente, de has-

ta 10 cm de altura, rizomatosa, con raíces

fibrosas. Hojas planas, laxas, glabras.

Panojas parcialmente incluidas en la

vaina, abiertas, gráciles, de hasta 5 cm

de largo, teñidas de morado. Crece en las

vegas altoandinas, principalmente en los

cursos de agua. Es muy notable el color

rojo de los tallos de las plantas que cre-

cen parcialmente sumergidas. LG: 3200-

3800 m. N* 83/86.

Polygonum monspeliensis (L.)

Desf., Fl. Atlant. 1: 66. 1798.

Pasto anual, robusto. Introducido; lo-

calmente común en los bordes de los ríos

y en las vegas altoandinas. LG: 2000-3200

m. N* 83/00.

Puccinellia oresigena (Phil.)

Hitchc., Contr. U.S. Natl. Herb. 24: 326.

1927.

Hierba perenne con raíces fibrosas,

algo lauca; hojas planas o algo dobladas;

panojas gráciles, densas, angostas, de

hasta 8 cm de largo. Crece exclusivamen-

te en partes más secas y elevadas de las

vegas altoandinas. LG: 3200-3700 m. Ns.

83450, 83487, 83503, 83514, 83517, 83527,

83539.

Stipa chrysophylla Desv. in Gay, Fl.

Chil. 6: 278, lám. 76, fig. 2. 1854.

Pasto perenne, glabro, en champas de

hasta 40 cm de altura; hojas rígidas, pun-

zantes, amarillentas. Panojas

contraídas, casi siempre parcialmente

incluidas en la vaina superior; antecio

pubescente o parcialmente glabro, con

pappus plumoso en la base; glumas violá-

ceas. Localmente común en la zona andi-

na. LG: ca. 2000-4000 m; LC: presente pe-

ro rango altitudinal no registrado. N's.

81592, 83338-B, 83423, 83438.

Kalin Arroyo et al.

43

Stipa frigida Phil., Viage Des. Ataca-

ma 228. 1860.

Pasto perenne, glabro, densamente

cespitoso, formando pequeñas champas

aisladas, de hasta 30 cm de altura; hojas

punzantes, amarillo-doradas hasta grisá-

ceas. Panoja angosta, violácea; antecios

pubescentes; arista con pappus plumoso

en la base. Muy abundante en la zona an-

dina hasta la zona nival. LG: ca. 2400-4150

m; LC: ca. 3400-3950 m. RT: ca. 2400-4150

m. N%s. 81522, 83387, 83459, 83/68, 8358),

83587, 83601.

Stipa pogonathera Desv. in Gay, Fl.

Chil. 6: 277. 1854.

Pasto perenne, rizomatoso, glabro.

Tallos flexibles, de hasta 85 cm de altura;

hojas poco punzantes. Panoja laxa,

pauciflora; glumas violáceas; antecios

pubescentes en la parte inferior; arista

cortamente plumosa. Crece protegido

entre los arbustos en el matorral. LG:

1950-3300 m; LC: 2650-2750 m; RT: 1950-

3300 m. N's. 81542, 83334.

Stipa speciosa Trin. et Rupr., Mém.

Acad. Imp. Sci. Saint-Petersbourg, Sér.

6, Sci. Math., Seconde Pt. Sci. Nat. 5: 45.

1842.

Pasto perenne, glabro, formando

champas. Cañas floríferas de hasta 45 cm

de altura; hojas rígidas, punzantes,

verde-amarillentas. Panoja contraída,

incluida en la vaina superior, de hasta 15

cm de largo; glumas pajizas; antecios

hirsutos y arista con pappus basal. Esca-

sa; mezclada con Stipa chrysophylla

Desv. y S. frigida Phil. LG: ca. 2050-2400

m. N%s. 81510, 83309, 83338-A.

Stipa tortuosa Desv. in Gay, Fl. Chil.

6: 281. 1854.

Pasto perenne, glabro, laxo, de hasta

40 cm de altura, verdes-opaco, con tallos

zigzageantes en los nudos. Inflorescen-

cias paucifloras; antecios peludos con

arista geniculada. En lugares pedregosos

secos en el curso inferior del Río de Vale-

riano. LC: 2050 m. N?* 83646.

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

Trisetum preslei (Kunth) Desv. in

Gay, Fl. Chil. 6: 347. 1854.

Pasto pequeño, cespitoso, de hasta 12

cm de altura. Hojas conduplicadas, algo

curvas, pilosas. Panojas densas, oblon-

gas, verde-violáceas, brillantes, de hasta

2.5cm de largo. Crece en los bordes de las

vegas altoandinas; escaso. LG: 3600-3800

m. N* 83/62-B.

Vulpia sp.

Individuos secos estériles de este gé-

nero de especies anuales fueron observa-

dos en el matorral de Haplopappus

baylahuen Remy. LG: 1800-2350 m; LC:

2050 m; RT: 1800-2350 m.

IRIDACEAE

Sisyrinchium i¡ridifolium H.B.K.,

Nov. Gen. Sp. 1: 324. 1816.

Hierba perenne, de hasta 15 cm de al-

tura, con rizoma corto y raíces delgadas.

Tallos alados. Hojas ensiformes, pocas,

glaucas. Espatas 1-2, hasta con dos flo-

res; flores azules con centro amarillo.

Crece en vegas pastoreadas. LG: 2000-

2600 m. N's. 81515, 83371.

JUNCACEAE

Juncus balticus Willd., Ges. Naturf.

Freunde Berlin Mag. Neuesten Entdeck.

Gesammten Naturk. 3: 298. 1809.

Hierba perenne robusta, de hasta 35

em de altura, con rizoma duro y tallos ci-

líndricos punzantes; vainas café-oscuras,

brillantes. Inflorescencias pseudolatera-

les, laxas, multifloras, rojizas. Crece al

lado de los cursos de agua y en los bordes

de las vegas. LG: 2000-3500 m. Ns. 83410,

83490, 83526, 83534.

Juncus bufonius L. var. condensa-

tus Cout., Bol. Soc. Brot. 8: 102. 1890.

Hierba anual pequeña, de hasta 5 cm

de altura. Hojas filiformes, más cortas

que el tallo. Flores reunidas en fascículos

Kalin Arroyo et al.

44

densos; profilos blancos, escariosos. Ob-

servada una sola vez en suelo pantanoso

alterado, a orillas del Río de Valeriano.

LC: 2000 m.

Juncus chilensis Gay, Fl. Chil. 6:

146. 1854.

Hierba pigmea, perenne, estolonifera,

con tallos de 4 cm de altura. Hojas filifor-

mes con tabiques poco notables; vainas

rojizas, biauriculadas. Inflorescencia

terminal, más corta que las hojas, uniflo-

ra, verdosa. Crece en las vegas altoandi.-

nas.. LG: 3150-3600 m. N's. 81557, 83550,

83551.

Juncus scheuchzerioides Gaud.,

Ann: Sei. Nat:, sér. 1, 5: 100, 182%

Hierba perenne, cespitosa, rizomato-

sa. Tallos de hasta 12 cm de altura. Hojas

filiformes, cilíndricas, tabicadas. Inflo-

rescencia terminal, más corta que las ho-

jas; capítulos 1-3, de hasta 0.6 cm de lar-

go, rojizos; anteras tan largas como los

filamentos. Crece en las vegas altoandi-

nas. LG: ca. 2800-3400 m. N* 83545.

Juncus stipulatus Nees et Meyen,

Nov. Actorum Acad. Caes. Leop.-Carol.

Nat. Cur. 19, suppl. 1: 126. 1843.

Muy parecido a la especie anterior,

pero las anteras más cortas que los fila-

mentos y las flores de hasta 3.5 mm de

largo. Crece en las vegas altoandinas.

LG: 2800-3350 m. N's. 81559, 83/82.

Oxychloe andina Phil., Viage Des.

Atacama 226, lám. 6, fig. c. 1860.

Perenne, dioica, cespitosa, formando

cojines grandes. Tallos de hasta 15 cm de

altura, cubiertos en la base por los restos

de hojas muertas. Hojas imbricadas en

dos o tres filas; vainas grandes, anchas y

biauriculadas; lámina cilíndrica, con

ápice agudo, punzante. Flores termina-

les, las de los individuos masculinos lar-

gamente pedunculadas, las de los femeni-

nos apenas sobresaliendo de las hojas.

Fruto una cápsula con pericarpio duro,

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

rojo-brillante. Integrante de las vegas al-

toandinas. LG: 3400-3700 m. N” 83582.

Patosia clandestina (Phil.) Buch.,

Bot. Jahrb. Syst. 12: 64. 1890.

Hierba dioica perenne, rizomatosa,

formando grandes cojines apretados.

Tallos de hasta 10 cm de largo, Hojas con

vainas anchas persistentes en los tallos;

láminas angostas, canaliculadas, con

borde finamente dentado, comúnmente

acodadas. Flores de los individuos mas-

culinos largamente pedunculadas; flores

de los femeninos ocultas en las vainas de

las hojas terminales. Cápsula ovoide,

castaña. Una de las plantas pulvinadas

más importantes de las vegas altoandi-

nas. LG: 2850-3700 m. N%s. 81646, 83530,

835/41, 83542.

JUNCAGINACEAE

Trigiochin palustris L., Sp. Pl. 338.

1753.

Hierba perenne erecta, con estolones

bulbosos, de hasta 30 cm de altura. Hojas

filiformes, cilíndricas, envainadoras,

carnosas, con ápice agudo. Escapo floral

cilíndrico, grácil; inflorescencia racimo-

sa; flores pequeñas, verdes; frutos line-

Kalin Arroyo et al.

ales, separándose desde la base en tres

mericarpios. Crece en lugares pantano-

sos a lo largo de los ríos y en las vegas al-

toandinas. LG: 2350-3200 m. N” 83/08.

ORCHIDACEAE

Habenaria paucifolia Lindl., Gen.

Sp. Orehd, Pl 310, 1835,

Hierba grácil de hasta 25 cm de altu-

ra, con un pequeño tubérculo y raíces del-

gadas. Tallo con hojas lanceoladas, agu-

das, envainadoras, algo distantes. Inflo-:

rescencia densa; flores blanco-verdosas.

Se observó una sola población en el mar-

gen del Río de Valeriano, en terreno

arenoso-pedregoso. LC: 2000 m. N” 83638.

POTAMOGETONACEAE

Potamogeton strictus Phil., Viage

Des. Atacama 224. 1860.

Hierba acuática perenne; tallos lar-

gos, cilíndricos; hojas lineales con ápice

obtuso apiculado; inflorescencias laxas,

con 2-6 verticilos de flores. Habita en los

cursos de agua en las vegas altoandinas;

escasa. Observada en la cuenca de

Quebrada Cantarito. LG: 3200-3500 m. N”

83544.

NUEVOS LIMITES LATITUDINALES

Norte:

Alstroemeria andina Phil.

Alstroemeria venustula Phil.

Azorella madreporica Clos

Carezx vallis-pulchrae Phil.

Chaetanthera leptocephala Cabr.

Hordeum santacrucense Parodi et Nico-

ra

Laretia acaulis (Cav.) Gill. et Hook.

Mulinum spinosum (Cav.) Pers.

Ranunculus uniflorus Phil. ex Reiche

fma. uniflorus.

Senecio oreinus Cabr.

Tetraglochin alatum (Gill. ex H. et. A.)

O.K.

Trechonaetes laciniata Miers

Valeriana stricta Clos

Valeriana vaga Clos

Viola montagnei Gay

Sur:

Lycium vergarae Phil.

Malesherbia lactea Phil.

Malesherbia rugosa Gay

Oxalis uspallatensis Knuth

Tagetes multiflora H.B.K.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo fue posible gracias al fi-

nanciamiento otorgado por el Departa-

mento de Desarrollo de la Investigación,

Universidad de Chile (Proyecto N* N1755

Gayana, Bot. 41(1-2): 3-46, 1984

8315) y por el Fondo Nacional de Investi-

gación (Proyecto N” 259/82). Deseamos

agradecer a nuestro amigo y colega Os-

car R. Matthei, Departamento de Botáni-

ca, Universidad de Concepción, por su

valiosa colaboración en la identificación

del material de las gramíneas. También

queremos extender nuestro sinceros

Kalin Arroyo et al.

agradecimientos a Enrique Estrada,

Andrés Oberhauser, Gonzalo Pérez y

Francisco Squeo, alumnos de la Facultad

de Ciencias Básicas y Farmacéuticas,

Universidad de Chile, Santiago, sin cuya

constante ayuda y compañía durante la

expedición de 1983, el trabajo en terreno

no habría sido posible.

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Gayana, Bot. 41(1-2): 47-51, 1984

ISSN 0016-5301

EL GENERO BARTSIA L. (SCROPHULARIACEAE) EN CHILE

THE GENUS BARTSIA L. (SCROPHULARIACEAE) IN CHILE

Clodomiro Marticorena* y Mary T. Kalin Arroyo**

RESUMEN

Se hace un estudio taxonómico del gé-

nero Bartsia L. (Scrophulariaceae) en

Chile, estableciéndose que en este país

crecen tres especies: B. chilensis Benth.,

B. bartsioides (Hook.) Edwin y B. meye-

niana Benth.; estas dos últimas se citan

por primera vez para la flora de Chile. Se

incluyen descripciones y una clave para

la identificación de las especies.

ABSTRACT

A taxonomic study of the genus Bart-

sia L.:(Scrophulariaceae) in Chile is pre-

sented; three species are accepted for the

country: B. chilensis Benth., B. bart-

sioides (Hook.) Edwin, and B. meyeniana

Benth.; the last two are new additions to

the flora of Chile. Descriptions and a key

to the species are included.

KEY WORDS: Bartsia, Scrophula-

riaceae, Taxonomía, Flora de Chile.

* Departamento de Botánica, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de Concepción, Casilla 2407, Con-

cepción, Chile.

** Departamento de Ciencias Ecológicas, Facultad de Ciencias Básicas y Farmacéuticas, Universidad de Chile, Casilla 653, Santiago,

Chile.

Gayana, Bot. 41(1-2): 47-51, 1984

Marticorena y Kalin Arroyo

INTRODUCCION

El género Bartsia L. (sensu str.)

comprende alrededor de 60 especies y

presenta una interesante distribución ge-

ográfica disyunta: Norte de Europa; Sur

de Groenlandia; Noreste de Canadá,

Europa Central, Pirineos, Portugal, Nor-

te de Africa (Marruecos), Oeste de Afri-

ca (Cameroon), Este de Africa, desde

Etiopía hasta Tanzania, y Sudamérica

desde Venezuela y Colombia a lo largo de

los Andes hasta el Centro de Chile. Suda-

mérica presenta el mayor número de es-

pecies (Hartl, 1975).

En este trabajo hemos adoptado el cri-

terio seguido por Tutin (1972) mantenien-

do a Bellardia All. y a Parentucellia Viv.

como géneros diferentes de Bartsia; am-

bos géneros se encuentran presentes co-

mo malezas en el centro y sur de Chile,

con B. trixago (L.) All. y P. viscosa (L.)

Caruel, respectivamente.

Hasta ahora se había citado dos espe-

cies de Bartsia para Chile: B. chilensis

Benth. y B. pumila Benth. (Reiche, 1911),

esta última para “Tanca en la provincia

de Tacna”, territorio que ahora pertene-

ce al Perú. Materiales provenientes de

varias expediciones a los Andes de la I

Región nos han permitido aclarar el esta-

do actual de este género en Chile, exclu-

yendo a B. pumila y agregando dos espe-

cies no citadas para la flora chilena.

MATERIALES Y METODOS

El estudio se ha hecho siguiendo los

métodos convencionales, basándose pre-

ferentemente en los caracteres morfoló-

gicos, siendo en este caso de especial im-

portancia la presencia o ausencia de pe-

los en las anteras, mucrón basal de las

anteras bien desarrollado o incipiente y

relaciones de tamaño entre las diferentes

piezas florales.

La totalidad del material estudiado

proviene del Herbario de la Universidad

de Concepción (CONC).

Bartsia L., Sp. Pl. 602. 1753 (nom.

cons.).

Hierbas anuales o perenne o subarbus-

tos pubescentes y glandulosos. Hojas

opuestas, sésiles, dentadas o crenadas.

Flores en racimos espiciformes bracte-

ados, Cáliz tubular, campanulado,

4-lobulado. Corola tubulosa, bilabiada;

labio superior o gálea entero; labio infe-

rior trilobulado. Estambres 4, didínamos,

inclusos en la gálea; anteras glabras o

más frecuentemente peludas, general-

mente apiculadas o mucronadas en la ba-

se. Estigma capitado. Cápsula loculici-

da; semillas numerosas, pequeñas, longi-

tudinalmente estriado-costadas. Tipo:

Bartsia alpina L. (typ. cons.).

CLAVE PARA LAS ESPECIES

1. Anteras glabras, múticas o apenas mucronadas en la base;

Mantas, AV a A AS 1. B. chilensis

1. Anteras peludas, evidentemente mucronadas en la base;

plantas perennes.

2. Corola de 15 a 20 mm de largo; tallos erectos............

2. B.bartsioides.

2. Corola de 6 a 10 mm de largo; tallos ascendentes. ........3. B. meyeniana.

48

Gayana, Bot. 41(1-2): 47-51, 1984

1. Bartsia chilensis Benth. in DC.,

Prodr. 10: 547. 1846; Reiche, Fl. Chile 6:

96. 1911.

Hierba anual de hasta 50 em de altura,

erecta, ramificada, hispido-glandulosa,

con pubescencia pátula o retrorsa; rami-

ficaciones opuestas. Hojas opuestas, sési-

les, con la base atenuada hasta semiabra-

zadora, oblongas a linear-lanceoladas,

obtusas, las inferiores de hasta 4.5 cm de

largo por 0.7 cm de ancho, gradualmente

menores hacia el extremo de los tallos;

margen plano hasta revoluto, grosera-

mente crenado. Flores opuestas en raci-

mos espiciformes terminales hojosos;

brácteas florales semejantes a las hojas

variando hasta lineales y dentadas. Pe-

dúnculos de 1.2 a 2.5 mm de largo. Cáliz

de 8 a 10 mm de largo, densamente

estipitado-glanduloso y las glándulas

entremezcladas con pelos blancos tiesos;

lóbulos del cáliz lineales, casi obtusos, en-

teros o con algunos lóbulos. Corola rojo-

purpúrea, de 12 a 17 mm de largo; tubo

corolar más largo que los lóbulos, algo

contraído en el centro, pubescente y

estipitado-glanduloso, especialmente en

la parte superior y gálea; gálea ligera-

mente más larga que el labio; lóbulos del

labio aovado-elípticos, el central algo

mayor que los laterales. Filamentos

glabros; anteras glabras o raramente

con algún pelo, múticas o ligeramente

apiculadas en la base. Ovario densamen-

te pubescente; estilo de m/m 10 mm de

largo, hirsuto; cápsula más corta que el

cáliz, densamente estrigosa, especial-

mente hacia el extremo; pelos tiesos, re-

costados, brillantes, de color marrón.

Material estudiado:

IV Región. Prov. Limarí: Talinay, fal-

da del cerro, entre el matorral, 300 m, 23-

X-1966, JILES 5022 (CONC), Prov. Choa-

4 9

Marticorena y Kalin Arroyo

pa: Cavilolén, en barranco del camino,

600 m, 13-X-1953, JILES 2397 (CONC);

Cavilolén, 600 m, 8-XI-1954, JILES 2669

(CONC).

V Región. Prov. Quillota: Limache,

Quebrada Ward, 21-XII-1928, GARAVEN-

TA 1456 (CONC); Limache, Lliu-Lliu, Ca-

jón de la Patagúilla, 23-X1-1931, GARA-

VENTA 2273 (CONC), Prov. Valparaíso:

Valparaíso, cerros de Laguna Verde, 7-X-

1930. GARAVENTA 1650 (CONC); Valpa-

raíso, camino a Laguna Verde, 7-XII-

1930, BEHN s/n (CONC 21520); Valpa-

raíso, 6-X1-1932, BEBHN s/n (CONC

24402); Valparaíso, XI-1930, BENTHO

1285 (CONC); Valparaíso, Las Tablas,

5-XI-1931, GARAVENTA 2433 (CONC);

Valparaíso, Laguna Verde, 2-XI-1930,

GARAVENTA 1865 (CONC); Viña del

Mar, Marga-Marga, X-1932, JAFFUEL

3243 (CONC).

Distribución geográfica:

Planta primaveral de las alturas ba-

jas del centro de Chile, desde el Cerro Ta-

linay (30%52'S-71"40'W) hasta San Antonio

(33"35'S-71"38"W). Edwin (1971) conside-

ra a B. chilensis como sinónimo de B. mu-

tica Benth., que crece en el Departamen-

to de Lima, Perú, entre 2.200 y 2.500 m

s.m. Dado que esta sinonimia está basa-

da en el estudio de sólo dos ejemplares

peruanos, es evidente que es necesario

disponer de abundante material para

comprobar la identidad de ambas espe-

cies. Las dos especies fueron descritas si-

multáneamente por Bentham en el

Prodromus (Bentham, 1846).

2. Bartsia bartsioides (Hook.) Ed-

win, Field Mus. Nat. Hist., Bot. Ser.

13(V-B.3): 492. 1971.

Lamourouxia bartsioides Hook., Bot.

Misc. 2: 234. 1831.

Gayana, Bot. 41(1-2): 47-51, 1984

Bartsia densiflora Benth. in DC.,

Prodr. 10: 548. 1846; Weddell, Chl. And.

2:130. 1860.

Bartsia thiantha Diels, Bot. Jahrb.

Syst. 37. 432. 1906.

Hierba perenne o subarbusto erecto,

de hasta 40 cm de altura, densamente pu-

bescente y estipitado-glanduloso, ramoso

desde la base; tallos densamente hojosos.

Hojas opuestas, sésiles, ensanchadas en

la base, de 8-16 (-40) mm de largo por 2.5

(-6) mm de ancho; margen plano hasta

'revoluto, crenado a dentado; ápice obtu-

so. Flores en racimos espiciformes den-

sos, cortamente pedunculadas; brácteas

florales lanceolado-lineares, dentadas

hasta subenteras; pedúnculos de 1.8-4

mm de largo. Cáliz de 10-17 mm de largo,

densamente estipitado-glanduloso; lóbu-

los del cáliz lineales, aleznados, de m/m

el mismo largo que el tubo. Corola ama-

rilla, a veces purpúrea hacia el extremo,

de 15 a 20 mm de largo; tubo corolar casi

glabro en la parte inferior y gradualmen-

te estipitado-glanduloso hacia el extre-

mo, especialmente hacia la gálea; gálea

m/m del mismo largo que el labio; lóbu-

los del labio aovados, m/m iguales entre

sí. Filamentos glandulosos; anteras pelu-

das, apiculadas en la base; pelos de las

anteras largos, crespos, blancos. Ovario

densamente pubescente; estilo de m/m

15 mm de largo, esparcidamente hirsuto.

Cápsula de 10-11 mm de largo, más corta

que el cáliz, densamente sericeo-pu-

bescente con pelos recostados, tiesos.

Material estudiado:

I Región. Prov. Parinacota: Camino

de Arica al Portezuelo de Chapiquiña,

km. 95, 3350 m, 8-I1-194, MARTICORE-

50

Marticorena y Kalin Arroyo

NA, MATTHEI y QUEZADA 25 (CONC);

Camino de Arica al Portezuelo de Chapi-

quiña, km 84, 3500 m, 24-1X-1958, RICAR-

DI y MARTICORENA 4747/1132 (CONC):

Camino a Chapiquiña, quebrada frente a

la central hidroeléctrica, 3400 m, 8-V-

1972, RICARDI, WELDT y QUEZADA 303

(CONC); Cuesta de Chapiquiña, 3360 m,

25-111-1961, RICARDI, MARTICORENA y

MATTHEI 144 (CONC); Camino de Za-

pahuira a Putre, km 13; en quebrada sur-

cada por riachuelo, 3300 m, 5-V-1972, RI-

CARDI, WELDT y QUEZADA

(CONC).

Distribución geográfica:

En Chile conocida sólo de la zona

del Portezuelo de Chapiquiña

(1819'S-6928'W) en la cordillera del De-

partamento de Arica, I Región, entre 3300

y 3500 m s.m., como componente del to-

lar. También se encuentra en las altas

cordilleras de Perú, desde el Departa-

mento de Ancash hasta el de Puno (Ed-

win, 1.c). Esta cita constituye la primera

de esta especie para la flora de Chile.

3. Bartsia meyeniana Benth. in DC.,

Prodr. 10: 546. 1846; Weddell, Chl. And. 2:

125, tab. 61, B. 1860; Edwin, Field Mus.

Nat. Hist., Bot. Ser. 13(V-B.3): 501. 1971.

Hierba perenne ascendente, ramosa

desde la base, de hasta 10 cm de altura,

hirsuta y estipitado-gladulosa; tallos ho-

josos desde la base. Hojas opuestas, sési-

les, atenuadas o ligeramente ensancha-

das en la base, oblongo-lanceoladas, ob-

tusas, de 3 a8.5mm de largo por 1.2a1.5

mm de ancho, revolutas, crenadas. Flo-

res en racimos espiciformes cortos, muy,

cortamente pedunculadas, opuestas de a

pares o más frecuentemente solitarias en

Gayana, Bot. 41(1-2): 47-51, 1984

la axila de una bráctea; brácteas seme-

jantes a las hojas; pedúnculos de 1.5 a 2

mm de largo. Cáliz de 8a 10 mm de largo,

densamente hirsuto y estipitado-

gladuloso; lóbulos del cáliz lanceolados,

obtusos, ligeramente más largos que el

tubo. Corola amarilla con el extremo roji-

zo, hasta completamente roja, de 6 a 10

mm de largo, casi glabra hasta pilosa y

estipitado-gladulosa; gálea más corta o

más larga que el labio; labio reflejo; ló-

bulos del labio aovados, iguales entre sí.

Filamentos glabros o con algunas glándu-

las; anteras peludas; apiculadas en la

base; pelos de las anteras blancos, largos

y crespos. Ovario pubescente; estilo fino

y esparcidamente pubescente. Cápsulas

del largo del cáliz, cubiertas de pelos fi-

nos recostados.

Material estudiado:

I Región. Prov. Parinacota: Cordille-

ra del volcán Tacora, ca. 4300 m, IV-1926,

WERDERMANN 1144 (CONC); Camino

de Arica al Portezuelo de Chapiquiña, km

96, 3450 m, 9-I1-1964, MARTICORENA,

MATTHEI y QUEZADA 54 (CONC); Ca-

mino de Chucuyo a las Lagunas de Cota-

cotani, km 8, 4500 m, 13-11-1964, MARTI-

CORENA, MATTHEI y QUEZADA 233

(CONC); Entre Parinacota y Lago Chun-

gará, 4250-4350 m, 18-I1V-1980, KALIN

Marticorena y Kalin Arroyo

ARROYO, VILLAGRAN y

2598 (CONC).

MORENO

Distribución geográfica:

Andes de Perú (Depto. de Junín), de

Bolivia y del norte de Argentina. En Chi-

le, igual que B. bartsioides, esta especie

crece en los Andes del Departamento de

Arica, pero llegando a mayor altura has-

ta la estepa de gramíneas, donde frecuen-

temente se encuentra protegida bajo las

champas de Festuca orthophylla Pilger.

El tipo proviene del volcán Tacora, en la

frontera chileno-peruana.

Observación:

Es probable que la cita de B. pumila

Benth. hecha por Reiche (1.c.) se refiera

a B. meyeniana, pero no descartamos la

posibilidad de que B. pumila, que crece

en el Departamento de Puno, vecino a

Chile, se encuentre también en los Andes

de Arica. Edwin (l.c.) ha elegido para

ella el nombre de B. diffusa Benth.; es

una especie muy afín a B. meyeniana.

De esta especie hemos examinado el

siguiente material: Perú: Huarón, about

14.000 ft. Flowers yellow, 12-IV-1922,

MACBRIDE € FEATHERSTONE 1117

(CONC); Depto. Junín. Between Apocal-

pa and Pariahuanca, 4.500 m, 16-I11-1939,

STORK 10938 (CONC).

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Gayana, Bot. 41(1-2): 53-60, 1984

ISSN 0016-5301

EL GENERO MUHLENBERGIA SCHREBER (POACEAE) EN CHILE

THE GENUS MUHLENBERGIA SCHREBER (POACEAE) IN CHILE

Oscar Matthei *

RESUMEN

Se estudia las especies del género

Muhlenbergia Schreber (Poaceae) que

crecen en Chile. Se propone una nueva

combinación: M. asperifolia (Nees et Me-

yen ex Trinius) Matthei. Además se indi-

ca por primera vez como componentes de

la flora de Chile a las siguientes especies:

M. peruviana (Beauv.) Steudel y M. fasti-

giata (Presl) Henrard. Se agrega una

clave que permite determinar a las espe-

cies y un mapa con sus respectivas distri-

buciones. Se acompaña dibujos origina-

les de las plantas y de las láminas en cor-

te transversal.

ABSTRACT

The species of the genus Muhlenber-

gía Schreber (Poaceae) in Chile are stu-

died. A new combination is proposed:

M.asperifolia (Nees et Meyen ex Trinius)

Matthei. In addition, the following spe-

cies are recorded for the first time for the

flora of Chile: M. peraviana (Beauv.)

Steudel and M. fastigiata (Presl)

Henrard. Keys, distribution maps and

original illustrations (including cross-

sections of leaves) are provided for these

species.

KEY WORDS: Munhlenbergia Schreb.

(Poaceae), Chile

* Departamento de Botánica, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de Concepción. Casilla 2407, Concep-

ción, Chile.

Gayana, Bot. 41(1-2): 53-60, 1984 Matthei

INTRODUCCION

La presencia del género Muhlenbergia

fue señalada por primera vez para

nuestro país por J.D. Hooker, Fl. Antarc.

(1847: 391). En esta obra describe a

Muhlenbergia rariflora Hook. f., especie

colectada por Darwin en la localidad de

Tres Montes ( 46% 50'S; 75” 25'W), Chile.

Posteriormente Desvaux (1854: 292) en

su revisión de las gramíneas chilenas

comparte esta opinión y la señala como

único representante de este género para

el país.

Un criterio diferente sostiene Steudel

(1854: 121), quien en poder del material

de Tres Montes (1. c.) describe a esta es-

pecie como Orthachne retorta Nees ex

Steudel. Esta posición genérica es com-

partida por Hughes (1923: 301) el cual, re-

curriendo a la descripción ya existente,

realiza la nueva combinación: Orthachne

rariflora (Hook. f.) Hughes. Esta ubica-

ción es aún aceptada por algunos auto-

res; Roig (1978: 237) entre otros, la indica

bajo este nombre para la flora patagóni-

ca argentina.

Tanto Bentham (1881: 81) como Mez

(1921: 208) sostienen que esta especie

pertenece al género Stipa y aceptando las

descripciones ya existentes hacen las res-

pectivas combinaciones: Stipa rariflora

(Hook. f.) Bentham y Stipa retorta (Nees

ex Steudel) Mez. Posteriormente Matthei

(1965: 55) comparte esta posición genéri-

ca y en su revisión de las especies chile-

nas de este género la cita como Stipa ra:

riflora (Hook. f.) Bentham.

De lo expuesto se desprende que la pri-

mera especie originalmente señalada co-

mo Munhlenbergíia para Chile, en realidad

no pertenece a este género.

Parodi (1928: 117) al revisar las gramí-

neas argentinas del género Sporobolus

efectúa la combinación: Sporobolus aspe-

rifolius Nees €: Meyen ex Nees = Muhlen-

bergia asperifolia (Nees 8: Meyen ex Ne-

es) Parodi. Lo que permite señalar, esta

vez en forma definitiva, la presencia del

género Munhlenbergia en Chile, ya que el

material que dio origen a Sporobolus as- '

perifolius proviene de las cercanías de

Copiapó y río Maipú (Chile). Pero Parodi

(1.c.) al transferir esta especie al género

Muhlenbergíia recurre a la descripción

que había realizado Nees en 1841 como

Sporobolus asperifolius Nees €: Meyen ex

Nees (1841), no considerando por lo tanto

la descripción previamente existente y

realizada por Trinius en 1840: Vilfa aspe-

rifolia Nees €: Meyen ex Trinius. Debido a

que esta descripción es anterior, posee

prioridad y es el basiónimo indicado para

la nueva combinación que se propone:

Munhlenbergía asperifolia (Nees € Meyen

ex Trinius) Matthei, especie que hasta el

momento era el único representante del

género conocido para el país. Interesante

ha sido el hallazgo de dos nuevas especies

para Chile, las que se citan por primera

vez como componentes de nuestra flora:

Muhlenbergia fastigiata (Presl)

Henrard y Muhlenbergia peruviana (Be-

auv.) Steudel.

MATERIALES, METODOS Y AGRADECIMIENTOS

Para la realización de los cortes ana-

tómicos se usó la misma técnica de traba-

jos anteriores (Matthei 1965: 4-5). Ade-

más del Herbario de la Universidad de

Concepción (CONC), se consultó, gracias

a la gentileza de la Sra. Mélica Muñoz, el

material depositado en el Museo Na:

cional de Historia Natural (SGO). Tam-

bién fueron importantes las colecciones

realizadas recientemente por C.

Villagrán y M. Kalin Arroyo en el norte

del país, en especial el material de M.

34

fastigiata, colectado por C. Villagrán y

que no estaba representado en nuestro

herbario. Los títulos de las revistas se

abreviaron conforme a Lawrence,

G.H.M.; Buchheim, A.F.G.; Daniels,

G.S. y H. Dolezal (1968). Los cortes ana-

tómicos fueron realizados por la Sra. Su-

sana Córdova y los dibujos por el Sr. Nel-

son Moya; reciban todas estas personas

mis sinceros agradecimientos por su co-

laboración y ayuda.

Gayana, Bot. 41(1-2): 53-60, 1984 Matthei

POSICION SISTEMATICA

El género Muhlenbergia de acuerdo a

Muñoz (1959: 227) junto con Sporobolus

forma parte de la tribu Sporoboleae. Am-

bos géneros son muy afines y los caracte-

res que se indican a continuación permi-

ten su separación.

a Lemma con nervadura media prolongada en breve mucrón o arista.

Pericarpio insoluble en agua

Muhlenbergia

a” Lemma aguda o acuminada, sin mucrón o arista.

Pericarpio soluble en agua

Sporobolus

MUHLENBERGIA Schreber, Gen. Pl. ed. 8: 55. 1789.

Plantas anuales o perennes, rizomato-

sas o cespitosas. Láminas convolutadas,

lineales. Inflorescencia en panoja amplia

o contraída. Espiguillas 1-floras. Glumas

2, persistentes, lanceoladas, la superior

entera o tridentada. Lemma lanceolada,

con ápice agudo, mucronado o aristado.

Palea lanceolada, tan larga como la lem-

ma. Lodículas truncadas. Cariopse fusi-

forme.

Descripción anatómica de la lámina:

Superficie adaxial con costillas bien pro-

nunciadas, de ápice plano o redondeado,

todas ellas aproximadamente del mismo

Clave para diferenciar las especies:

tamaño. Esclerénquima ausente o pre-

sente. Al estar presente forma trabas

adaxiales y abaxiales o trabas abaxiales

y bandas adaxiales. Células buliformes

asociadas con células incoloras formando

una columna que separa a las costillas.

Parénquima clorofílico dispuesto en for-

ma de corona alrededor de los haces. Ha-

ces vasculares rodeados de dos vainas, la

externa parenquimatosa, formada de cé-

lulas grandes y con clorofila, la interna

esclerenquimática, formada de células

pequeñas.

Especie tipo: M. schreberi Gmel.

a. Plantas perennes. Glumas enteras. Lemma aguda o mucronada. Lámina

con esclerénquima.

b. Láminas mayores de 2 em de largo y con 10-12 haces. Rizomas largos

POCO PLOofUndOsS:. 7. A O A AS. JERIA Le 1. M. asperifolia.

b' Láminas pequeñas, 3-5 mm de largo y con 8 haces. Rizomas cortos y

PFOFMOAOS +. 0 2, DIERAN A 2. M. fastigiata.

a” Plantas anuales. Glumas tridentadas. Lemma aristada. Lámina sin

ESCIerENQUIMa!. LA A A, UA 7 0. 3. M. peruviana.

1. Muhlenbergia asperifolia (Nees é:

Meyen ex Trinius) Matthei comb. nov.

Vilfa asperifolia Nees €: Meyen ex Tri-

nius, Agrostidea I. Vilfea. Mem. Acad.

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Nom. nud. -Sporobolus asperifolius Nees

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55)

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Gayana, Bot. 41(1-2): 53-60, 1984 Matthei

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Nova Addenda ad Floram Patagonicam.

Anales Mus. Nac. Hist. Nat. Buenos Aires

7: 190. 1902. Typus: Prope Tilopozo ad

marginem paludis illius ingentis salsae

fere sicae 23” 20” lat. m 7.000 p.s. m pauca

specimina.

Sporobulus sarmentosus Grisebach,

Symbolae ad Floram argentinam. Abh.

Kónigl. Ges. Wiss. Góttingen 24: 295. 1879.

Typus: Pampa pr. Laguna de Pocho (Ar-

gentina).

Sporobolus deserticolus R.A. Phil.,

Verzeichniss der von F. Philippi auf der

Hochebene der Provinzen Antofagasta

und Tarapacá gesammelten Pflanzen.

Anales Mus. Nac. Chile. Bot. 2” Sect. 8:

82. 1891. Typus: Ad Aguas Calientes lec-

tus Tarapacá (Chile).

Sporobulus copiapinus R.A. Phil.,

Anales Univ. Chile 94: 6. 1896. Typus:

Prope Copiapó lecta (Chile).

Icones: Parodi, Physis (Buenos

Aires) 9: 215. Lám. 1: 5. 1928. Schwabe,

Lilloa 16. Lám. 3: F-I. 1948. Hitchcock,

Manual of the grasses of the United Sta-

tes. Fig. 546. 1951. Pilger, Gramineae II

in Die nat. Pflanzenfamilien 14 d Fig. 16.

1956. Soderstrom, Contr. U.S. Natl. Herb.

34, 4. Pl. 12. Fig. 1. 1967. En el texto: Fig.

1 AS Fig: 2: ¿An Fig:-3:

Planta perenne, con rizomas delgados

y largos que pueden alcanzar hasta 50 cm

Tallos erectos. 8-30 cm alto. Hojas dis-

puestas en forma dística. Vainas glabras,

aquilladas, más largas que los entrenu-

dos, 5-15 mm de largo. Lígula 0,5-1 mm

largo, dentada y finamente setosa en el

ápice. Láminas 1-2 cm de largo, planas o

convolutadas, 0,2-1 mm de ancho. Panoja

amplia, 5-20 cm de largo e igual ancho.

Espiguillas unifloras dispuestas sobre pe-

dicelos delgados, finamente escabrosos,

1-3 cm de largo. Gluma inferior

1-nervada, lineal, 1,4-1,8 mm de largo, la

36

superior 3-nervada, lineal-lanceolada,

1,2-1,7 mm de largo. Lemma 2 mm de lar-

go, 3 nervada, con el nervio central pro-

longándose en pequeño mucrón. 0,1 mm

de largo. Palea 2 nervada, bimucronada,

tan larga como la lemma. Callus glabro,

obtuso. Lodículas 2, truncadas. Es-

tambres 3. Anteras de 1-1,1 mm de largo.

Material estudiado:

TI Región. Prov. Iquique: Quebrada de

Tiliviche. En los campos de cultivo.

19.1.1971. ZOLLNER 1419 (SGO); Guavi-

ña. 13.3.1885. RAHMER (SGO): Pisagua.

Quebrada de Quiuña. 1151972

RICARDI-WELDT-QUEZADA 13

(CONC); Mamiña. 12.1.1950. PFISTER

(CONC).

IT Región. Prov. El Loa: Chiu-Chiu,

orillas del río Loa. 2.600 m s.m. 22.1.1980.

VILLAGRAN 2207 (CONC); Calama. Río

Loa. 1.195. PERRY (CONC) MEA

Ruinas al NO de San Pedro de Atacama.

16.2.1970. RODRIGUEZ € RIVERA 27

(CONC); Toconao. 7.1.1950. PFISTER

(CONC). Prov. Antofagasta: Encantada.

25.1.1901. REICHE (SGO).

TIT Región. Prov. Copiapó: Camino al

Salar de Maricunga. Km 71. 2.450 m s.m.

31.1.1963. RICARDI-MARTICORENA-

MATTHEI 561 (CONC); Cordillera Río

Turbio. Cordillera Cadillal alt. ca. 3.000

m 1.1926. WERDERMANN (B). Prov.

Huasco: Laguna Grande. 12.12.1982.

LAIHLACAR (CONC); Hacienda Los Co-

lorados. Valle de San Félix. Interior Valle

del Huasco. 1.700 m s.m. aprox. Sector

plano inmediato al río El Carmen.

15.4.1983. MIERES (CONC).

X Región. Prov. Llanquihue: Pampa.

Valle del Peulla. 1862. COX (SGO).

Distribución:

Especie de distribución bipolar: Amé-

rica del Norte y América del Sur. Hitch-

cock (1951:389) la señala para México y

para el Oeste y Centro de los Estados Uni-

dos de Norte América. Este mismo autor

(1927:392) indica su presencia en Bolivia

y Parodi (1928: 211-212) da una amplia

distribución para Argentina, que

Gayana, Bot. 41(1-2): 53-60, 1984 Matthei

comprende desde la Puna de Atacama

hasta la Patagonia, abarcando las si-

guientes provincias: Jujuy, San Juan,

Mendoza, Córdoba, Buenos Aires, Capital

Federal, Río Negro, Neuquén y Chubut.

En Chile, para donde fue originalmen-

te descrita, es una especie frecuente en

los lugares húmedos y salobres de las re-

giones I, II y III. También existe en el

Museo Nacional de Historia Natural

(SGO) material proveniente de la X Re-

gión, pero posiblemente la presencia de

esta especie en esta zona está restringida

a la parte cordillerana cercana de Argen-

tina, país en el cual se encuentra

ampliamente distribuida.

2. Muhlenbergia fastigiata (Presl)

Henrard, Meded. Rijks-Herb. 40: 59. 1921

- Sporobolus fastigiatus Presl, Rel. Haen-

keanae 1: 241. 1830. Typus: Hab. in Peru-

ma”? (PR).

Icones: Parodi, Physis (Buenos Aires)

9: 214. Fig. 2. 1928; Schwabe, Lilloa 16:

Lam. 5. F-G. 1948. En el texto: Fig. 1: B.

Fig. 3.

Planta perenne con tallos naciendo de

rizomas profundos, éstos de 4-7 cm de lar-

go, con parte basal áfila. Hojas dispues-

tas en forma dística. Vainas glabras, 3-4

mm de largo. Láminas convolutadas,

glabras 3-5 mm de largo. Lígula hialina,

glabra, 0,2-0,5 mm de largo. Panoja pe-

queña apenas sobresaliendo de los tallos,

0,5-1 mm de largo. Espiguilla uniflora,

dispuesta sobre pedicelo de 1-2 mm de

largo. Glumas anchamente lanceoladas,

menores que la lemma. La inferior

1-nervada, 1 mm de largo, la superior 1,2

mm de largo. Lemma 3-nervada, glabra,

2 mm de largo de ápice agudo o levemen-

te mucronado, mucrón 0,1 mm de largo.

Lodículas, 0,1 mm de largo, truncadas en

el ápice, tan largas como anchas.

Material estudiado:

I Región. Provincia de Parinacota:

Alrededores de Visviri (Altiplano de Ari-

ca) 4.100 m s.m. 9.8-1-80. VILLAGRAN

2747 (CONC).

37

Distribución:

Hitchcock (1.c.) señala a esta especie

para Perú, Bolivia y Argentina. Para es-

te último país corrobora su existencia Pa-

rodi (1.c.) y Cabrera (1957: 379). En Chile

se le encuentra en el límite norte de la al-

ta Puna en la región de Tarapacá. Es la

primera cita que se da de esta especie pa-

ra Chile.

3. Muhlenbergia peruviana (Beauv.)

Steudel, Nom. Bot. ed. 2. 1: 4. 1840

Clomena peruviana Beauv., Ess.

Agrost. 28 pl. 3 f. 20. 1812 - Agrotis peru-

viana (Beauv.) Spreng., Syst. Veg. 1: 262.

1825 - Mvhlenbergia clomena Kunth, Rev.

Gram. 1. 64. 1829. Typus: Pl. nouv. com-

muniquée par M. THIBAUT. Perú.

Icones: Beauvois, Ess. Agrost. 28 pl. 7

f, 10 pl. 3. E 207 18125 Parodi, Physis

(Buenos Aires) 9: 215. Lam. 1: 5. 1928.

Schwabe, Lilloa 16: Lam. 3: F-I. 1948. En

el texto: Fig? 1: D; E. F1g. 3.

Planta anual, 2-6 cm de alto. Hojas con

vainas glabras, abultadas en la base, 2-7

mm de largo. Láminas glabras, convolu-

tadas o planas, 2-8 mm de largo. Lígula

hialina, aguda, 0,7-1,1 mm de largo. Pa-

noja estrecha, 1-3 cm de largo. Espi-

guillas sobre pedicelos de 0,2-1,5 mm de

largo. Gluma inferior 1-nervada, lineal,

1,5-1,17 mm de largo. Gluma superior

3-nervada, lanceolada, 2 mm de largo,

tridentada; dientes 0,5 mm de largo.

Lemma 2 mm de largo con el dorso y

margen finamente pubescente. Palea bi-

nervada tan larga como la lemma, fina-

mente pubescente en el dorso. Callus ob-

tuso, glabro. Lodículas truncadas de 0,1

mm de largo. Anteras 0,6 mm de largo.

Fruto fusiforme 1,2 mm de largo,

embrión alcanzando la mitad de él.

Material estudiado:

I Región. Provincia de Parinacota: Cer-

ca de Putre. 1981. BELMONTE 28

(CONC). Provincia de Iquique: Entre Si-

tani y Cariquima, a 12 Km de Cariquima

Gayana, Bot. 41(1-2): 53-60, 1984 Matthei

Fig. 1. Muhlenbergia asperifolia. A. Planta x0.5 (RICARDI, MARTICORENA € MATTHEI 561); M. fas-

tigiata. B. Planta x 1 (VILLAGRAN 2747); C. Espiguilla x 27 (VILLAGRAN 2747); M. peruviana.

D. Glumas x 12 (MARTICORENA, MATTHEI € QUEZADA 351 B). E. Lemma x 12 (MARTICO-

RENA, MATTHElI é€ QUEZADA 351 B).

58

Matthei

53-60, 1984

Gayana, Bot. 41(1-2):

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59

Gayana, Bot. 41(1-2): 53-60, 1984 Matthei

3.800 m s.m. 20.3.1982. KALIN ARROYO

4135 (CONC); Camino de Cancosa al lími-

te con Bolivia. Km 2.400 m s.m. 18.2.1964.

MARTICORENA-MATTHEI-QUEZADA

351 B (CONC).

VII Región. Provincia de Talca: Cor-

dillera de Talca: El Picazo. El Alto de La

Laguna. 26.1.1939. BARROS 208 (SGO).

Distribución:

Hitchcock (1928: 387) la señala para

México, Ecuador, Perú, Bolivia y Argen-

tina. Parodi (1928: 214-216) la indica para

las siguientes provincias de Argentina:

Salta, Tucumán, Catamarca y Córdoba.

Para Chile se le indica por primera vez y

es una especie frecuente de la alta Cor-

dillera de la Provincia de Tarapacá, don-

de crece en zonas abiertas, entre los

3.600-4.000 m s.m.

E. Barros colectó esta especie en la

Cordillera de la Provincia de Talca. La

presencia de esta planta en un lugar tan

austral de nuestro país y tan alejado del

principal centro de distribución (Tarapa-

cá) es difícil de explicar, sólo futuras co-

lecciones nos podrán indicar la real

distribución de esta especie .

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Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84. 1984

ISSN 0016-5301

CONTRIBUCION AL CONOCIMIENTO DE LAS DIATOMEAS CHILENAS HI

EL GENERO CHAETOCEROS EHR (SUBGE NERO PHAEOCEROS GRAN).

CONTRIBUTION TO THE DIATOM FLORA OF CHILE. III.

THE GENUS CHAETOCEROS EHR. (SUBGENUS PHAEOCEROS GRAN)

Patricia Koch* y Patricio Rivera**

RESUMEN

Mediante técnicas de microscopía fo-

tónica y electrónica se estudia las espe-

cies del género Chaetoceros Ehr., subgé-

nero Phaeoceros Gran, encontradas a lo

largo de la costa chilena entre los 18%S y

565: C. atlanticus, C. dichaeta, C. eibe-

nii, C. convolutus, C. peruvianus, C. co-

arctatus, C. criophilus, C. danicus y C.

dadayi. Características generales de es-

tos taxa parecen ser la presencia de un

patrón de costas en la cara valvar y de un

proceso labiado en cada valva. El proce-

so labiado de C. eibenii, C. convolutus y

C. peruvianus no se prolonga hacia el in-

terior de la valva. La forma de la sección

de las setas fue constante en C. convolu-

tus y C. peruvianus, pero varió conside-

rablemente en C. atlanticus, C. dichaeta

y C. eibeniíi. Chaetoceros atlanticus/ C.

dichaeta y C. convolutus/ C. peruvianus

son taxa que presentan algunas caracte-

rísticas morfológieas muy similares, lo

que dificulta su determinación si sólo se

utiliza técnicas de microscopía fotónica.

ABSTRACT

The species of the diatom genus Chae-

toceros Ehr., subgenus Phaeoceros

Gran, present along the Chilean coast

between 18%S and 56%S are studied using

light and electron microscopy techni-

ques, viz., C. atlanticus, C. dichaeta, C.

eibeníi, C. convolutus, C. peruvianus, C.

coarctatus, C. criophilus, C. danicus and

C. dadayi. The general characteristics

for these taxa seem to be a costae pattern

on the valve face and a labiate process on

each valve. The labiate process of C.

eibeníi, C. convolutus and C. peruvianus

lacks a protusion or thickening on the in-

side. The cross section of setae was cons-

tant in C. convolutus and C. peruvianus

but very variable in C. atlanticus, C.

dichaeta and C. eibenii. Identification

problems are evident in C. atlanticus/ C.

dichaeta and C. convolutus/ C. peru-

vianus, specially when only light micros-

cope techniques are used.

KEY WORDS: Diatoms, Bacillariophy-

ceae, Morphology, Chaetoceros, Chile.

* Institute Profesional de Osorno, Departamento de Acuicultura y Alimentos, Laboratorio de Limnología, Casilla 933, Osorno, Chile.

** Departamento de Botánica, Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de Concepción, Casilla 2407, Concep-

ción, Chile.

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

INTRODUCCION

La familia Chaetoceraceae compren-

de, según el sistema de clasificación pro-

puesto por Simonsen (1979), los géneros

Acanthoceras Honigmann (?), Bacte-

riastrum Shadbolt y Chaetoceros Ehren-

berg.

Diversos autores han realizado estu-

dios taxonómicos de especies recientes

del género Chaetoceros utilizando mate-

rial colectado a lo largo de la costa chile-

na.

El subgénero Phaeoceros (Gran 1897)

reúne especies robustas, provistas de lar-

gas y fuertes setas generalmente orna-

mentadas con espinas, con cromatóforos

dispuestos tanto en las células como en

las setas. Once taxa han sido señalados

hasta la fecha para el área de estudio,

18%S - 565 (Rivera, 1983).

La delimitación de las especies de

Chaetoceros, al nivel de resolución y de

aumento del microscopio fotónico (LM),

depende principalmente de caracteres

tales como forma y longitud de los fila-

mentos, forma de las aberturas, forma de

la célula, posición y número de cromató-

foros, dirección y ángulo de divergencia

de las setas y estructura general de la es-

pora de resistencia.

El avance de las técnicas de microsco-

pía electrónica hace posible la realiza-

ción de estudios más exactos de la morfo-

logía del frústulo y permite profundizar

el conocimiento de estructuras potencial-

mente útiles en taxonomía. Las ventajas

de estas técnicas quedan demostradas en

las interesantes investigaciones sobre di-

versas especies de Chaetoceros realiza-

das por Helmcke y Krieger (1954), Okuno

(1956 y 1970), Blasco (1970), Hargraves

(1972), Duke, Lewin y Reimann (1973),

Evensen y Hasle (1975), Fryxell (1978),

Hargraves (1979), Fryxell y Medlin

(1978); etc:

Estos trabajos ponen en evidencia la

gran relevancia que actualmente han ad-

quirido las estructuras más finas del

frústulo, como el proceso labiado, las cos-

tas, los poros, la estructura de las setas,

ete:

El abundante material biológico depo-

sitado en la colección diatomológica del

Departamento de Botánica de la Univer-

sidad de Concepción, el material de com-

paración obtenido en diversas institu-

ciones extranjeras, la disponibilidad de

equipos de microscopía fotónica y

electrónica y la abundante bibliografía

especializada de que se dispone, dan las

bases necesarias para realizar el presen-

te estudio, cuyo objetivo es conocer con

más exactitud algunas de las. especies

que forman parte de la flora diatomológi-

ca chilena. Dos trabajos han sido publica-

dos anteriormente en esta misma serie

(Rivera 1979; Rivera y Koch 1984), los

que contienen información sobre taxa

muy poco conocidos para el país y/o cuya

morfología no había sido aún estudiada

mediante técnicas de microscopía

electrónica.

MATERIALES Y METODOS

El área estudiada y los materiales y

métodos empleados se corresponden con

aquéllos señalados por Rivera (1981).

Al igual que en la revisión del género

Thalassiosira (Rivera, loc. cit.), se dispu-

so de casi la totalidad del material chile-

no analizado previamente por autores na-

cionales y extranjeros en sus investiga-

ciones sobre la microflora de Chile.

Los siguientes herbarios y colecciones

europeos y americanos, abreviados se-

gún el Index Herbariorum, aportaron

material para el presente estudio:

62

BM -British Museum (Natural

History), London,

England.

CONC

(DIAT-

CONC) -Departamento de Botáni-

ca, Universidad de Con-

cepción, Concepción, Chi-

le.

IMBB -Department of Marine

Biology and Limnology,

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

Section Marine Botany,

University of Oslo, Oslo 3,

Norway.

KASSEL -Naturkunde - Museum

der Stadt Kassel, Kassel,

Deutschland.

PH -Academy of Natural

Sciences, Philadelphia,

Pennsylvania, U.S.A.

Material de la Colección privada del

Dr. E. Balech fue también gentilmente

puesto a nuestra disposición. En gran

parte el presente trabajo fue realizado en

el Departamento de Botánica de la Uni-

versidad de Concepción.

RESULTADOS

Chaetoceros atlanticus Cleve

Figs. 1—5

tleve: P:T., p:11, Lám:. 2, Fig. 8, 1873:

Hustedt, F., p. 641, Figs. 363-364, 1930.

Cupp, E.E., p. 103, Fig. 59 A, 1943. Okuno,

H., p. 187, Lám. 2, Figs. 1-7, 1956. Even-

sen, D. L. et G.R. Hasle, pp. 157-158, Figs.

GRAO. Navarro, JN”, p. 306, Fig. 11,

1982.

Material examinado:

Región Arica:

23 3505-70 42*W, St. 33, 25.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1072

Región Punta Arenas:

56” 19'S-67” 09"W, St. 388, 16.11. 1930,

MANDA, Temp. 7:59 CC Sal. .33.98/7,

Hendey 1937, BM, DIAT-CONC 2350/2351,

DIAT-CONC, M-1463/1464

Chaetoceros atlanticus Cleve, Florida,

Alligator Harbor, PH, G. C. 45667

Chaetoceros atlanticus Var. neapolita-

na (Schróder) Hustedt, Antarctic Ocean,

Pacific Sector, St. 30 b, Eltanin XIII, Coll.

Bo “Hargraves,. June 4,.1964,.PH...G...C.

91087.

Células en filamentos homopolares de-

rechos con esquinas agudas o redonde-

adas no tocándose con las de las células

adyacentes. Aberturas amplias, hexago-

nales (Fig. 1). Valvas ovales; eje apical

alrededor de 6-25.8 im. Superficie valvar

convexa, con poroides distribuidos irre-

gularmente, 0-2 en 1 ym; en el margen

con un reborde hialino (Figs. 4-5). Manto

valvar 3.8-5 um de alto, constricción noto-

ria en su base de 0.6-0.7 ym de ancho. To-

63

das las valvas con un proceso labiado

central, parte externa en forma de tubo,

alrededor de 4-5.6 yum de longitud, a veces

algo curvado en su extremo distal (Figs.

1, 4-5); proceso de valvas terminales de

mayor tamaño que el de valvas intercala-

res. Cintura 1/3-1/2 del eje pervalvar. Se-

tas intercalares gruesas, largas, de-

rechas, naciendo cerca del margen val-

var, con base mediana o larga, oblicua;

cruce de las setas más afuera del margen

valvar, divergiendo en un amplio ángulo

agudo; setas circulares en sus bases

(Figs. 3-5), luego cuadrangulares; espi-

nas dispuestas sobre los cantos, ausentes

en la base, alrededor de 0.4-1 um de largo

(Fig. 3). Cromatóforos numerosos en for-

ma de plaquitas, situados en las células y

en las setas. Espora de resistencia desco-

nocida.

Morfología:

Aunque no se observaron células ter-

minales, la figura presentada por Even-

sen y Hasle (1975, Lám. 2, Fig. 11),

muestra una estructura similar a la de

las células intercalares.

Esta especie presenta amplia va-

riación en la dimensión de la cintura, des-

de 1/3 hasta 1/2 del eje pervalvar de la cé-

lula. Okuno (1956), en un análisis de ma-

terial del Pacífico Norte, observó la pre-

sencia de delicadas costas radiales en la

superficie valvar de las células. Esta ca-

racterística no fue observada en el mate-

rial antártico analizado por Evensen y

Hasle (1975).

El material analizado correspondien-

te a C. atlanticus Var. neapolitana, Phila-

delphia PH, G. C. 91087 (Fig. 1), es consi-

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

derado como perteneciente a la variedad

tipo, debido al tipo de abertura y a la

orientación de la base de las setas.

Distribución:

C. atlanticus fue encontrado en el nor-

te de Chile (23% 50”S-70* 42"W) y en la

muestra que Hendey recolectara a los 56"

19'S-67” 09” W; este autor señaló además

la especie para los 56* 50'S.

C. atlanticus var.neapolitana ha sido

citada en Chile para Bahía de Junin

(Krasske 1941); Coquimbo, Los Vilos

(Avaria, Muñoz y Uribe, 1983); Bahía de

Valparaíso (Avaria 1971). La variedad no

fue encontrada en el abundante material

estudiado, como tampoco en el material

de Avaria (1971) correspondiente a la

Bahía de Valparaíso, donde el autor la se-

ñala como abundante.

Chaetoceros dichaeta Ehrenberg

Figs. 6-12

Ehrenberg, C., p. 200, 1844. Cupp, E.

E., p. 106, Fig. 60, 1943. Okuno, H., pp. 10-

11, Lám. 652, 1970.Evensen, D. L. et G. R.

Hasle, p. 157, Figs. 1-5, 1975.

Material examinado:

Región Talcahuano-Calbuco:

ASAS 13 05 W. 18.11.1937, 24 Uhr,

Mar. Plankton 30 m, Krasske 1941, KAS-

SEL 4139/4140/4141, DIAT-CONC, M-1455

Región Punta Arenas:

56” 19'S-6709'W, St. 388,16.4. 1930, 100-

0 m, Temp. 7.59” C, Sal. 33.58%., Hendey

1937, BM, DIAT-CONC 2350/2351, DIAT-

CONC, M-1463/1464

Brategg Expedition 1947-1948, Hasle 1969,

IMBB:

52” 50'S-90” W, St. 1, 13.12. 1947, DIAT-

CONC 2324/2325, DIAT-CONC, M-1441;

53” 49'S-90 W, St. 2, 13.12. 1947, DIAT-

CONC, M-1435

Chaetoceros dichaeta Ehrenberg, An-

tarctic Ocean, Pacific Sector, St. 212 B,

64

1964, Eltanin XV, Coll. P. Hargraves, PH,

G. C. 91154

Chaetoceros dichaeta Ehrenberg, An-

tarctic Ocean, Pacific Sector, St. 10, May

20, 1964, Eltanin XIII, Coll. P. Hargraves,

PH, G. C. 91078.

Valvas circulares a elípticas, eje api-

cal alrededor de 13.6-27.7 jm. Superficie

de la valva, manto valvar y base de las

setas con poroides distribuidos irregular-

mente, 0-2 en 1 im, proyectados sobre la

superficie. Manto valvar 2.2-3.6 um de al-

to, con una constricción muy tenue en la

base.

Reborde hialino situado entre la sy-

perficie valvar y el manto, provisto de

largas proyecciones filamentosas,

huecas, no ramificadas. Proceso labiado

situado en el centro de todas las valvas,

parte exterior tubular, derecha, alrede-

dor de 9-23.5 um de largo, orientado en

sentido del eje pervalvar. Setas termina-

les e intercalares con la misma estructu-

ra, gruesas, circulares en la base, luego

poligonales. Espinas situadas en los can-

tos de las setas, pequeñas, 0.4-1 um de

largo, ausentes en la base; entre los can-

tos de la seta y en sentido del eje princi-

pal, se encuentra una línea de poros, 6 en

1 um en el lado exterior, 3en 1 ym en el la-

do interior. Setas terminales naciendo

cerca del margen valvar, base casi para-

lela al eje pervalvar, luego oblicuas para

hacerse posteriormente casi paralelas al

eje del filamento. Setas intercalares con

la base casi paralela al eje pervalvar.

Cromatóforos numerosos en forma de

placas pequeñas situados en la célula y

en las setas. Espora de resistencia desco-

nocida. El resto de las características de

la célula son similares a aquéllas descri-

tas para C. atlanticus.

Morfología:

El largo de la parte exterior del proce-

so labiado es un carácter variable para la

especie. Okuno (1970) lo señala entre 6 y

10 um de largo, mientras que Evensen y

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

Hasle (1975) muestran una valva termi-

nal con un proceso de alrededor de 12.9

um de longitud. En el material chileno

analizado, esta estructura varió entre 9 y

23.5 yum, siendo siempre más larga en las

valvas terminales que en las intercalares

(Fig. 10).

El análisis del material chileno aporta

nuevos antecedentes sobre la morfología

y variabilidad de las proyecciones fila-

mentosas situadas en el canto valvar.

Evensen y Hasle (1975) denominan a es-

tas estructuras “filamentous spines””;

ellas son sin embargo huecas, más delga-

das hacia los extremos distales y a menu-

do se presentan quebradas cerca de sus

bases (Fig. 6). Proyecciones filamento-

sas aún más largas, situadas en la zona

del eje apical (Evensen y Hasle, loc. cit.),

no fueron encontradas en el material es-

tudiado.

Nuestras fotografías al microscopio

electrónico de barrido (SEM) no permi-

ten establecer si las valvas poseen o no un

patrón de costas radiales; según los auto-

res señalados anteriormente éste existi-

ría sólo en las valvas escasamente silifi-

cadas.

La sección transversal de las setas del

material chileno estudiado difiere

completamente de aquél señalado por

Evensen y Hasle (1975) para la especie en

cuestión. Una sección circular se presen-

ta solamente en la base de las setas

(Figs. 6, 12), pues inmediatamente luego

del cruce, éstas se vuelven paulatina-

mente poligonales, penta o hexagonales

(Figs. 10-11), con cantos bien definidos y

provistos de espinas (Figs. 8-9). Sin em-

bargo esta particularidad no es tan noto-

ria como en otras especies del género,

por ejemplo C. convolutus, debido a que

la línea de poros que corre longitudinal-

mente entre los cantos de las setas se en-

cuentra algo levantada sobre la superfi-

cie, disminuyendo el efecto angular de

las setas (Figs. 9, 11).

A pesar de la variabilidad observada

en el material chileno, características ta-

les como la orientación de la base de las

setas, la presencia de líneas longitudina-

les de poroides en ellas, la forma del pro-

ceso labiado, la existencia de un anillo de

65

proyecciones filamentosas en el canto

valvar, entre otras, nos inducen a creer

que realmente se trata de €. dichaeta.

Otros comentarios acerca de esta especie

ya fueron discutidos bajo €. atlanticus.

Distribución:

Según el material estudiado €. dicha-

eta se distribuye desde los 4146'S hasta

los 5619'S; anteriormente había sido ci-

tado solamente para la Bahía de Valpa-

raíso (Avaria 1971).

Chaetoceros eibinii Grunow

PIES: 13 >= Za

Grunow, A., in H. Van Heurck, Lám.

82, Figs, 9,10, 1882. Meunier, A., p. 15,

Lám. 1, Figs. 1M1-13Lám: 7; Fig. 56; 1913.

Hustedt, F., pp. 653-655, Fig. 369, 1930.

Navarro, J. N., p. 312, Fig. 28, 1982.

Material examinado:

Región Arica:

1820”S-74"16"W, St. 8.8.

DIAT-CONC, M-1068

23%05'S-70%30"W, June 1978, DIAT-

12, 1972,

CONC, M-821

23728 8-1003LW. 24.9: 1963, DUE

CONC, M-171

23%49"S-70%33"W, St. 34, 25.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1074

23%49'"S-70%48"W, St. 32, 24.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1071

2349'S-70%53"W, St. 31, 24.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1070

23%49”-7116"W, St. 30, 24.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1069

2350'S-7042"W, St. 33, 25.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1072

Región Talcahuano - Calbuco:

36%37"S-7257"W;, 31.10. 1965, Rivera

1969, DIAT-CONC, M-1049

3640'”S-73%08"W, 7.11. 1965, Rivera

1969, DIAT-CONC, M-1050

20.11. 1965, Rivera 1969, DIAT-CONC,

M-1053

36"43'S-7307'W, Rivera 1969, DIAT-

CONC, M-1048

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

13.11. 1965, Rivera 1969, DIAT-CONC,

M-1051

26.12. 1965, Rivera 1969,

M-1056

14.1. 1966, Rivera 1969,

M-1058

25.2. 1966, Rivera 1969,

M-1062

3644'S-7301"W, 24.10. 1965, Rivera

1969, DIAT-CONC,M-1047

21.11. 1965, Rivera 1969, DIAT-CONC,

M-1054

37"08'S-7310"W, 28.3. 1977, Rivera y

Valdebenito 1979, DIAT-CONC,

M-659

37"10'S-73%11"W, 28.3. 1977, Rivera y

Valdebenito 1979 DIAT-CONC, M-661

11.3. 1977, Rivera y Valdebenito 1979,

DIAT-CONC, M-664

4304'5-73%34"W, Enero 1978, DIAT-

CONC, M-1122

4309'S-7344'W,

CONC, M-1227

DIAT-CONC,

24.4. 1978, DIAT-

Células cilíndricas, formando fila-

mentos derechos; esquinas no tocándose

con las de las células adyacentes. Abertu-

ras amplias, lanceoladas o hexagonales.

Epi e hipovalvas con la misma estructu-

ra, elípticas, levemente convexas y con la

parte central suavemente deprimida; eje

apical alrededor de 24-53 um. Costas ra-

diales sobre las valvas, originándose en

la depresión central, aparentemente ra-

mificadas, 4 en 1 um (Figs. 19-20). Super-

ficie valvar y manto con poros, algo

sobresalientes hacia el lado externo, 0.13-

0.15 um de diámetro, 0-3 poros en 1 yum

(Figs. 15-20). Manto valvar alrededor de

3.2-4.1 ym de alto, aún más desarrollado

en los extremos apicales de la célula, lle-

vando en la unión con la superficie val-

var, un reborde hialino (Figs. 15-16). Pro-

ceso labiado situado en la depresión

central de cada valva, visible al LM (Fig.

13), parte exterior 1.5-2.3 ym de largo,

con base ensanchada algo globosa, luego

aplanado, algo constreñido, orientado en

sentido transapical (Figs. 15-17). Parte

interna del proceso no desarrollada,

abertura linear (Figs. 18-20). Cintura 1/3

a 1/2 del eje pervalvar o menor. Setas ter-

minales e intercalares diferentes sólo en

66

su orientación; setas terminales diver-

giendo en ángulo agudo; setas intercala-

res con base oblicua al eje pervalvar,

cruzándose al mismo nivel o poco más

adentro del margen valvar, desviándose

del plano apical y curvándose hacia el eje

transapical. Todas las setas nacen algo

más al interior del margen valvar, usual-

mente cuadrangulares, a veces penta o

hexagonales, con los cantos bien de-

sarrollados, provistas de espinas, menos

numerosas hacia los extremos distales.

Setas provistas de costillas circunferen-

ciales, 2-3 en 1 ym (Fig. 22). Cromatófo-

ros numerosos en forma de plaquitas, si-

tuados en las células y en las setas. Espo-

ra de resistencia desconocida.

Morfología

Meunier (1913) señala que las setas de

C.eibenii poseen una sección transversal

hexagonal, lo cual fue refutado por Hus-

tedt (1930), al afirmar que ellas son

cuadrangulares. El análisis del material

chileno demuestra que ambos autores es-

taban en la razón, y que, incluso, hasta

secciones pentagonales pueden presen-

tarse en la especie (Figs. 15,21, 22).

En el punto en que se cruzan las setas

de valvas intercalares y probablemente

debido a la forma en que lo hacen (Fig.

15), existe una aparente fusión de sus pa-.

redes. Esta característica es común, se-

gún nuestras observaciones, para varias

especies del género, por ejemplo C. loren-

zianus y C. diadema.

Aunque para algunas especies de

diatomeas céntricas, la orientación del

proceso labiado no es un carácter cons-

tante, sí lo es en el material estudiado de

C. eibenii, donde se presenta en sentido

del eje transapical (Fig. 20).

Distribución:

Según el material analizado, C. eibenii

se encuentra desde 1820'S hasta 43%09'S.

Este taxon se señala por primera vez

para las siguientes localidades:

1820"S-74 16"W> 2305"5-70 3 05We

23 28" S- 7031 W: 23249"8S-70 33

23749"5-7048"W* 23%49"S-70 "53 WE

23 49"S-T1 TG W>" 23 50"S-70 "12

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

4304'S-7334”*W; 43"09'S-73"44'W. Se la

conocía para Bahía de Concepción (Rive-

ra 1969), Río Chivilingo y Río Laraquete

(Rivera y Valdebenito, 1979).

Chaetoceros convolutus Castracane

Figs. 23 - 35

Castracane, F., p. 78, 1886. Hustedt,

F., p. 668, Fig. 378, 1930. Hendey, N. 1., p.

293, 1937. Fryxell, G. et L. K. Medlin, pp.

9-10, Figs. 43-49, 1981.

Material examinado:

Región Arica:

18"16"S-74”47"W, St.

DIAT-CONC, M-1028

1828'S-33%02'S/70*20'"W-71*%37"W,

DIAT-CONC, M-1489

23"49'5-70%33"W, St.

DIAT-CONC, M-1074

23"49'S-71*16"W, St.

DIAT-CONC, M-1069

23"50'5-70%42"W, St.

MNAE > CO NG +,

M-1072 24*34'S-72%22"W, St. 28, 31.12.

1957, Balech 1962, DIAT-CONC, M-1284

137 19.8. 1972,

34, 25:8. 1972,

30, 24.8. 1972,

391:20:9. 1972;

Región Coquimbo - Valparaíso

2806'S-11235 W, “St.- 38, 30.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1032.

3302511237 W, BTIAUI96A; PAvwarta

1965, DIAT-CONC, M-1112/1419; 15.4.1964,

Avaria 1965, DIAT-CONC, M-1113; 13.5.

1964, Avaria 1965, DIAT-CONC, M-1114;

3:27 1966, Avaria 1971, DIAT-CONC,

M-1118; 1968, Hasle y Heimdal 1970,

IMBB, DIAT-CONC 2196, DIAT-CONC,

M-198/852; 1978, DIAT-CONC, M-1121.

33%34'S-71%37"W, 22.11. 1967, Monteci-

no y Lopehandia 1972, DIAT-CONC,

M-1035; 16.1. 1968 Montecino y Lopehan-

dia 1972, DIAT-CONC, M-1036.

33730"5-12-30"W., 540,62, *1:9. 1972,

DIAT-CONC, M-1034

33 O 212 Wi? ato 02, * 33020 1960,

DIAT-CONC, M-730.

Región Talcahuano - Calbuco

36"40'5-73"08"W, 24.6.

1969, DIAT-CONC, M-1042

1965, Rivera

67

36"43'5-73%07"W, 29.10. 1965, Rivera

1969, DIAT-CONC, M-10348.

38"00'S-7350"W, 22.11. 1978, DIAT-

CONC, M-1356

39"03'S-74*03"W, St. 89, 14.3. 1960,

DIAT-CONC, M-746

41%46'S-73%05"W, 18.11 1937, 22 Uhr,

Oberfláchenplankton, Krasske 1941, Kas-

sel 4137/4138, DIAT-CONC, M-1453; 18.11.

1937, 24 Uhr, Mar. Plankton 30 m, Krass-

ke 1941, Kassel 4139/4140/4141, DIAT-

CONC, M-1455.

A A 527807 "W: 28521 VOTE HDIAT:

CONC; (Ma2ri28:5/1977,/DIAT:CONE;

M-1273; 16.12. 1977, DIAT-CONC, M-1275

4148"S-73205'W., 28.5: 0197751 DIAE:

CONC, M-1263; 5.8. 1977, DIAT-CONC,

M-1265

42%07'S-73"29"W, June 1978, DIAT-

CONC, M-1128

43%09'5-73%44*W, 30.3. 1978, DIAT-

CONC, M-1214; 24.4. 1978, DIAT-CONC,

M-1227; 8.6. 1978, DIAT-CONC, M-1244

45%12'S-75"28 W, 16.11. 1978, DIAT-

CONC, M-1360/1382

Región Punta Arenas:

474 TS 14220 WE St. 161€, 2.10. H9G2

DIAT-CONC, M-1091

47%47"S-74%54"W, St. 5 a, 1.10. 1972,

DIAT-CONC, M-1088

4748'"S-74*09"W, St. 6 d, 2.10. 1972,

DIAT-CONC, M-1093/1415

47*48'5S-74%47"W, St. 5, 110. 1972;

DIAT-CONC, M-1085

4750'S-74"46'W 16.11. 1978, DIAT-

CONC, M-1387

4757'S-714*22"W, St. 6 g, 3.10. 1972,

DIAT-CONC, M-1097

47"59'S-74%04'"W, St. 6 f, 8.10. 1972,

DIAT-CONC, M-618

49*08'S-742922 Wi StIIMPIS IO IILSIZS

DIAT-CONC, M-1099

49"10'S-74*24'W, 17.11. 1978, DIAT-

CONC, M-1364

49%24”'S-74 23'W;: St 85 610701972;

DIAT-CONC, M-1104

5033 STA CIS W, ISS LISTOS] 197as

DIAT-CONC, M-1107; St. 12, 10.10. 1972,

DIAT-CONC, M-1109

53 135-1310 WE +28:27 01973

CONC, M-1145; 16.12. 1975, DIAT-CONC,

M-1141; 17.12. 1975, DIAT-CONC, M-1147

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

5326'S-69%50"W, St. 5 Vert, 11.9. 1972,

DIAT-CONC, M-1004

5327'S-69*31"W, St.

1972, DIAT-CONC, M-966

5292102 Wi St: STnu, 129 1972,

DIAT-CONC, M-603

5336'S-6950"W, St. 4 Vert, 11.9 1972,

DIAT-CONC, M-961

535487014 W.. 'St..5:Alm, 15.9. 1972,

DIAT-CONC, M-1021

5414'S-69%46"W, St. 3 Alm, vert, 14.9.

1972, DIAT-CONC, M-998

54%24'S-6912'W, St. 1 Alm, horiz,

13.9. 1972, DIAT-CONC, M-1010

550 S-GELADIW 1 Zi.2.: 1917,

CONC, M-1163.

6: Horiz “BL.9.

DIAT-

Células reunidas en filamentos de-

rechos o levemente curvados, con es-

quinas no tocándose con las de las células

adyacentes (Figs. 23-24). Aberturas pe-

queñas, generalmente no visibles al LM.

Valvas subcirculares dimórficas, las su-

periores fuertemente convexas, las infe-

riores planas (Figs. 23-28,30,32); eje api-

cal alrededor de 8.4-28.8 ym. Manto val.-

var alrededor de 4.0-8.7 um de alto; en su

base con una constricción evidente al

LM, 0.7-1.1 um de ancho y 0.3-0:48 ym de

profundidad, con numerosos poros (4-5 en

1 um) y costas (6-7 en 11m), que se hacen

respectivamente más escasos y más difu-

sos hacia el centro de la valva (Figs. 26,

28, 32, 34, 35). Valvas superior e inferior

con un proceso labiado subcentral si-

tuado entre la zona de inserción de las se-

tas (Figs. 25-27, 30, 32, 34); parte externa

pequeña, tubular, alrededor de 0.56-0.66

um de largo (Figs. 25-27, 30, 32); interior-

mente no prolongado y sin estructura la-

biada típica (Figs. 31, 34). Cintura 1/3 del

eje pervalvar. Setas circulares en sus ba-

ses, luego cuadrangulares (Fig. 26), con

espinas más o menos robustas en los

márgenes, 2.5-3.9 ym de largo (Figs. 28-

29), menos numerosas hacia los extremos

distales. Costas perr >.ndiculares al eje de

la seta, 3-4 en 1 um (Figs. 26, 28-29, 33),

entre las cuales existe dos líneas parale-

las de poroides (Fig. ¿2). Setas de epival-

vas de células terminzles naciendo cerca

del centro, muy cercanas entre sí, luego

divergentes (Fig. 27). Prehensores se en-

cuentran en la zona de cruce de las setas

68

de epivalvas de células intercalares

(Figs. 25-26), faltando en las setas de cé-

lulas terminales. En las setas de hipoval-

vas, estos prehensores son de reducido

tamaño (Figs. 26, 30, 32). Numerosos cro-

matóforos en forma de plaquitas redon-

deadas situados en las células y en el inte-

rior de las setas. Espora de resistencia

desconocida.

Morfología:

Existe una cierta variabilidad en la

orientación de las setas. Aunque general.

mente éstas son divergentes, a veces sus

extremos distales se orientan paralelos al

eje del filamento. El tamaño de la cintura

puede alcanzar hasta la mitad del eje

pervalvar.

Los prehensores en la base de las se-

tas permiten que éstas se mantengan cru-

zadas. Según Fryxell y Medlin (1981), son

probablemente modificaciones de espi-

nas, carácter considerado como avanza-

do. Su presencia en las setas de hipoval-

vas no había sido aún señalado para la es-

pecie.

Un área silícea circular finamente

perforada fue observada en el nacimiento

de las setas de una epivalva (Fig. 31).

Mayores estudios deben ser realizados

para lograr un conocimiento cabal de su

estructura y función.

Distribución:

Según el material estudiado C. convo:

lutus se distribuye desde los 18"16'S hasta

los 54%14”S.

La especie se señala por primera vez

para las siguientes localidades:

18%16'S—74*%47'"W; 1828'S—7033"W;

234928=7033.W:. 23249512 A6NWE

232505—7042'W: .24%34*5=72022WS

2806"S=71235"W:: 33236" S=1ROWE

35%33"S—7242"W:; .3800"S=13-500WS

3920357403" Wi; 41%48'S=13-05W6

42%07"S=7329"W; 43095713 AA NME

45%12*8—75%28'W:. 47%47'S—T142U WS

47%47"S—74254'W:. 47*48"S 14-08

4748"S—74%47"W; 4750'5S—74"46'W;

4757"S—74%22"W; 47%59'5—74*04'W;

49*10"S—74*24"W: 49*24"5—T74 "23M

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

5313'S—73214'W;

5327*'S—69*31'W;

53%29'5—70*12'W; 53%36'S—6950'W';

53954*8—70 14” W: 54%14'S—6946'W;

5424'S—69"12'W; 55"10'S—68"45'W. Se la

conocía para Bahía de Junín, Bahía de

Iquique, 2039'S, 21"22'S (Krasske 1941);

Antofagasta, Coquimbo (Avaria et al.,

1983); Bahía de Taltal (Krasske 1941);

Bahía de Valparaíso (Avaria 1965, 1971);

Bahía de San Antonio (Montecino y Lo-

pehandia 1972); Bahía de Concepción

(Rivera 1969); Calbuco, Golfo de Relon-

caví, Golfo de Dalcahue (Krasske 1941);

Isla Quinchao, Isla Chelin, Puerto Cade-

na, Isla Cinco Hermanos (Avaria 1970);

Puerto Edén (Guzmán y Campodónico

1972); Magallanes (Lembeye et al.,

1975); Estrecho de Magallanes, sector

yriental (Lembeye et al., 1978); Ensena-

da Wilson, Magallanes (Campodónico et

al, 1975).

50%33"S—74"53'W;

53"26'"S—69"50'W;

Chaetoceros peruvianus Brightwell

Figs. 36 — 47

Brightwell, T., p. 107, Lám. 7, Figs. 16 —

18, 1856. Husteat, F., p.671, Fig. 380, 1930.

Okuno, H., pp. 191—192, Lám. 8, Figs. 1 —

8, 1956. Okuno, H., p. 12 Láms. 655-656,

1970. Navarro, J.N., p. 316, Fig. 36, 1982.

Sinonimia:

Chaetoceros chilensis Krasske, p. 266,

Lám. 4, Fig. 3; Lám. 6, Figs. 1, 2, 1941.

Material examinado:

Región Arica:

18"16'S—74%47"W, St. 13,

DIAT-CONC, M—1028

18-17S—T73%16"W, St. 10, 18.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1026/771

18"18'S—72%41"W, St. 9,

DIAT-CONC, M-1025

1820'5—70%47"W, St. 4, 17.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1023; St. 4 a, 17.8.

1972, DIAT-CONC, M-1024

1820'S—74"16"W, St. 12, 8.8.

19:87 1972;

18.8. 1972,

1972;

69

DIAT-CONC, M-1068

23"05'S—7030"W, Junio 1978, DIAT-

CONC, M-821

23"28'S—70"31'W,

CONC, M-171/826

23"49'5—71"16"W,

CONC, M-789/835

23"50'5—70"42'W, St.

DIAT-CONC, M-1072

24*34'5—72*22'W, St. 28, 31.12. 1957,

Balech 1962, DIAT-CONC, M-1284

24.9. 1963, DIAT-

24.8. 1972, DIAT-

33, 23.8. 1972.

Región Coquimbo — Valparaíso:

2806'S—71%29'W, St. 37, 30.8. 1972,

DIAT-CONC, M-1031

2806'S—71%35"W. St.

DIAT-CONC, M-1032

33%02'S—71%37"W, 7.4. 1964, Avaria

1965, DIAT-CONC, M-1112/1419;

13.5.1964, Avaria 1965, DIAT-CONC,

M-1114; 14.10. 1964, Avaria 1971,

DIAT-CONC, M-857; 1968, Hasle y

Heimdal 1970, IMBB, DIAT-CONC,

M-198

3334'S—71%37'W, 16.1. 1968, Monteci-

no y Lopehandia 1972, DIAT-CONC,

M-1036; 13.11. 1968, Montecino y Lo-

pehandia 1972, DIAT-CONC, M-840

33237 'S—11 53 W, 150 DO ds iS

DIAT-CONC, M-1075

35%36'"S—72*44*W,,. ¿St ¡WS.:.5093, ¿L8:a:

1931,-.40:0 m, Temp. 11:45. FSall

34.11”/”?, Hendey 1937, BM, DIAT-

CONC, M-1467

38, 30.8. 1972,

Región Talcahuano — Calbuco:

36%43"S—73%07'W, 13.5. 1965, Rivera

1969, DIAT-CONC, M-1041

390357403 W;. St: ,89, -1A3TAS60;

DIAT-CONC, M-746

45%52'S—75%40'W, 16.11. 1978, DIAT-

CONC, M-1361

5304'S—70%40'"W, St. WS. 580, 23.4.

1931, 90-0 m, Temp. 8.36”C, Hendey

1937, BM, DIAT-CONC, M-1461

5391357314 "W, 16.12. 1973574DL9%5

CONC, M-1141

5619'S—6709'W, St. 388, 16.4 1930, 100-

0. m,. Temp.+1:59%C,.Salad3.08-/3

Hendey 1937, BM, DIAT-CONC

2350/2351, DIAT-CONC, M-1463/1464

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

Brategg Expedition 1947-1948, Hasle 1969,

IMBB:

52"50'5—90W, St. 1, 13.12. 1947, DIAT-

CONE 2324/2325 10 DVATCONC,

M-1441

53"49'S—90"W, St. 2, 13.12. 1947, DIAT-

CONC, M-1435

Chaetoceros peruvianus Brightwell, Vir-

ginia, Gloucester Co., York River,

St. 2, September 1956, PH, G. C.

440/2 a

Células heteropolares, generalmente

solitarias, raramente en cortos filamen-

tos; esquinas no tocándose con las de las

células adyacentes; aberturas pequeñas.

Valvas elípticas, superior fuertemente

convexa, inferior plana; eje apical alre-

dedor de 10.8-40 um. Superficie valvar y

manto con pequeños poros distribuidos

irregularmente, 0-4en 11m, y con costas

muy tenues, radiales en la superficie val-

var (Figs. 41, 43, 45). Manto valvar 5-13.6

um de alto, con una constricción en su ba-

se de 0.7-0.9 ym de ancho y 0.3-0.6 um de

profundidad (Figs. 39, 41, 43, 45), clara-

mente visible al LM (Figs. 36-38). Proce-

so labiado situado entre las bases de las

setas, subcentral; parte externa cónica,

0.98-1.8 ym de largo (Figs. 39, 42 - 43, 45),

abertura interna elíptica, sin estructura

labiada (Figs. 40, 42). Cintura variable,

1/7 a 1/3 del eje pervalvar, generalmente

1/5. Origen, orientación y estructura ge-

neral de las setas similares a las de C.

convolutus. Las espinas son, sin embar-

go, más largas (3-8 um), y entre las cos-

tas existe 1-4 líneas de poroides (Figs. 46 -

47). Prehensores ausentes. Cromatóforos

numerosos en forma de plaquitas circula-

res dispuestos en la célula y en las setas.

Espora de resistencia desconocida.

Morfología:

Como caracteres bastante variables

de C. peruvianus deben considerarse la

orientación de las setas, el tamaño de la

cintura y la relación eje pervalvar/eje

apical. Se justifica así plenamente la opi-

nión de Hendey (1937) en el sentido de que

formas y variedades establecidas sobre

la base de estos caracteres no deben ser

consideradas como válidas

Las costas en la superficie valvar y en

el manto son extraordinariamente poco

marcadas, incluso difíciles de observar

al microscopio electrónico (Figs. 41, 45),

lo que se corresponde con las observa-

ciones de Okuno (1956 y 1970).

Algunas setas de las valvas superiores

a veces presentan un engrosamiento a

cierta distancia de su base (Fig. 44), coin-

cidiendo en cierta forma con lo observado

por Okuno (1970) en el material de Japón.

Distribución:

Aunque C. peruvianus era conocido a

lo largo de la costa chilena entre los 19”

40"S y 41” 24”S, este estudio demuestra su

presencia desde los 18” 17'S hasta los 56”

19'S.

La especie se señala por primera vez

para las siguientes localidades: 18”

17S-732 16"W:; 18 “185-722 IMIWEITES

20'S-70% -47"W:; 18 208-749 ME WMWMEHZSS

05'S-70% 30*W:; 23% :28"5-70%. SIWENE3

505-709 42*W; 28% .06*S-71. 29/WERF2Z8S

065-719 35"W> 33%. 345-112 33

375-112 53 "W; 39% 03S-74% 0IWERTSS

525-752 :40"W::: 53% 04*S-70-AO WES

13"S-73% 14" W; 56% 19'S-67” 09" W

Se la conocía para Bahía de Junín,

Bahía de Iquique (Krasske 1941); Iquique

(Avaria et al., 1983); 20% 395210722

Bahía de Taltal (Krasske 1941); 27” 08'S

(Balech 1962); Coquimbo, Los Vilos

(Avaria et al., 1983); Bahía de Valparaíso

(Avaria 1971); Frente a Curicó (35 30'S y

35” 36'S) (Hendey 1937); Bahía de Con-

cepción (Rivera 1969); 41” 24'S (Balech

1962).

Las siguientes cuatro especies del sub-

género Phaeoceros han sido señaladas

70

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

también por diversos autores para la cos-

ta chilena: Chaetoceros coarctatus, C.

criophilus, C. danicus y C. dadayi. A pe-

sar del alto número de muestras analiza-

das en el presente estudio, sólo escasas

células correspondientes a estos taxa

fueron encontradas. A continuación se

entrega para cada una de estas especies

un resumen de la información obtenida

en este trabajo, como también antece-

dentes sobre su distribución en el área de

acuerdo a trabajos anteriores.

Chaetoceros coarctatus Lauder

Fig. 48

Lauder, H.S., p. 79, Lám. 8, Fig. 8,

1864.

Material examinado:

Región Arica:

IST GN. St 0. 18:83. 1972,

DIAT-CONC, M-1026

PIS 12 AEWO St: 9: 18:8: 1972.

DIAT-CONC, M-1025

La especie difiere de los restantes

representantes del subgénero Phaeoce-

ros por las características de sus setas.

Las setas terminales posteriores del fila-

mento son muy robustas, fuertemente ar-

queadas, más cortas que las setas termi-

nales anteriores y provistas de numero-

sas espinas. Las terminales anteriores

son largas, robustas, curvadas hacia el

extremo posterior de la cadena, y con

menor número de espinas. Las setas in-

tercalares son aún menos robustas, con

menor número de espinas, pero también

curvadas hacia el extremo posterior de la

cadena. En el material estudiado se la en-

contró asociada a una especie de Vorti-

cella (Fig. 48), carácter también obser-

vado por Cupp (1943).

C. coarctatus había sido señalado

entre los 18” 28'S hasta los 31” 55'S: Arica

(Meyer 1970), 27” 08'S (Balech 1962);

Iquique, Los Vilos (Avaria et al., 1983).

Chaetoceros criophilus Castracane

Figs. 49-52

Castracane, F.., p. 78, figura en el tex-

to, 1886

TE

Material examinado:

Región Punta Arenas:

A ON Sd DO W” 17.9,

CONC, M-927/1133

53" 135-737 14”W, 16.12. 1975, DIAT-

CONC, M-1141

1972, DIAT-

Chaetoceros criophilus Castracane,

Best, Norway, PH, Boyer Coll. G-5-5

La posición taxonómica de esta espe-

cie es bastante confusa, y sus diferencias

con especies afines no han sido aún escla-

recidas mediante técnicas modernas.

Ha sido señalada por diferentes auto-

res a lo largo de la costa chilena entre los

285 y los 568: 32%S-71” 34'W (Hendey

1937); Bahía de Valparaíso (Avaria 1965

y 1976); Bahía de San Antonio (Montecino

y Lopehandia 1972); 35” 30'S-74* 18"W; 35"

36'S-72” 44”"W; Estrecho de Magallanes

(53-70 40"W); Cabo de Hornos (56”

19'S-67” 09'W) (Hendey 1937). Sin embar-

go, la revisión de gran parte de ese mate-

rial permite aseverar que muchas de las

citas del taxon para aguas chilenas se de-

ben a confusión con C. convolutus Castra-

cane y C. peruvianus Brightwell: DIAT-

CONC, M-1114; Bahía de Valparaíso,

Avaria 1965; DIAT-CONC, M-1036, DIAT-

CONC, M-840; Bahía de San Antonio,

Montecino y Lopehandia 1972; DIAT-

CONC, M-1467/1466; 35 36'S-72” 44'W,

DIAT-CONC, M-1461; 53 04”S-70% 40"W,

DIAT-CONC, M-1463/1464; 56” 19'S-67"

09"W, (Hendey 1937).

La figura 50 muestra un especimen

proveniente del sur del país, que podría

corresponder a esta especie dado que la

constricción en la base del manto valvar

es muy tenue. Este carácter, ya comenta-

do por Mangin (1917) para la especie, la

diferenciaría de C. peruvianus, aunque la

prolongación externa del proceso labiado

es de la misma forma y posición (Fig.

51).

Chaetoceros danicus Cleve

Figs. 53-56

Cleve, P. T., p. 55, 1889. Okuno, H., p.

10, Lám. 651, 1970. Takano, H., Lám. 101,

1982.

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

Material examinado:

Región Arica:

18 20"S-74% 16"W, St.

DIAT-CONC, M-1068

189% 288-332 025/70. 20-W-71* 37W,

DIAT-CONC, M-1489

12859. M9:

La especie fue encontrada en forma

muy escasa en material proveniente del

norte de Chile.

Eje apical 9.6-13.3 jm. Valvas llevan-

do en su centro un proceso labiado pe-

queño, proyectado hacia el exterior como

un tubo, de base algo ensanchada,

0.33-0.37 um de largo (Fig. 54). Manto val.-

var llevando en su base una constricción

de alrededor de 1.3 ym de ancho (Fig. 53).

Setas nacen desde los extremos apicales

de las valvas, perpendiculares al eje per-

valvar, derechas, circulares en la base

(Fig. 53), luego poligonales, con espinas

en los cantos (1.1-1.2 ym de largo); lados

de las setas con hileras longitudinales y

transversales de poroides, alrededor de

5-6 en 11m (Figs. 55-56). Las característi-

cas observadas concuerdan con la

descripción de Okuno (1970) para la espe-

cie.

C. danicus ha sido señalado para la

Bahía de Valparaíso (Zacharias 1906) y

para el Paso de Drake (Mever 1966).

Chaetoceros dadayi Pavillard

PayillardT ip. Iii Bol

Material examinado:

Región Arica:

18 28'S-33% 025/7029 -20-W-T713WE

DIAT-CONC, M-1489

Aunque sólo fragmentos de esta espe-

cie fueron encontrados en el material es-

tudiado, la orientación de las setas per-

mite caracterizar el taxon.

C. dadayi ha sido señalado para Arica,

Iquique, Antofagasta, Coquimbo, Los Vi.-

los (Avaria et al., 1983); 22” 38'S (Balech

1962).

En el abundante material analizado

no se observó la presencia de C. borealis,

especie del subgénero Phaeoceros seña-

lada anteriormente para la Bahía de Val-

paraíso por Zacharias (1906).

DISCUSION

Aunque aparentemente todas las espe-

cies del subgénero Phaeoceros presentan

un proceso labiado en cada una de las val.-

vas, característica ya insinuada por

Evensen y Hasle (1975) y por Fryxell y

Medlin (1981), su forma y tamaño pare-

cen ser típicos para cada una de ellas. Se-

gún nuestra información, nada ha sido

publicado para C. coarctatus y C. dadayi,

y las escasas células de estos taxa en-

contradas en el presente trabajo no per-

mitieron realizar estudios de microsco-

pía electrónica.

Un proceso de considerable tamaño,

claramente visible en el LM se presenta

en el centro de las valvas de C. atlanticus

y C. dichaeta. Aunque en ambas especies

es tubular y más largo en las valvas ter-

minales que en las intercalares, en C.

atlanticus varía entre 4-5.6 ym de longi-

tud, y se presenta generalmente con los

extremos curvados en la misma direc-

ción. En C. dichaeta el proceso es consi-

derablemente más largo, pudiendo alcan-

12

zar hasta 23.5 um.

En todas las restantes especies estu-

diadas, la parte exterior de este proceso

es de reducido tamaño. En C. convolutus

y C. danicus también es tubular. En C.

convolutus es de posición subcentral, y de

aproximadamente 0.56-0.66 um de longi-

tud; en C. danicus es aún más pequeño

(0.3-0.4 ym) y con la base algo ensancha-

da. En C. cibenii es de posición central,

con una base ensanchada para continuar

luego en forma de un tubo aplanado,

orientado en sentido transapical. En C.

peruvianus es de posición subcentral y

cónico. Sobre la base de las característi-

cas de C. criophilus anteriormente discu-

tidas, si las Figs.50-52 corresponden a es-

ta especie, el proceso labiado de este ta-

xon sería de forma y posición similar al

de C. peruvianus.

El proceso labiado de C. eibenii, C.

convolutus y C. peruvianus Carece de una

parte interior y tal vez ésta es una gene-

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

ralidad para los representantes del sub-

género Phaeoceros, pero en ningún caso

para el género, ya que se conoce, por

ejemplo, que €. affinis, C. decipiens, etc.,

poseen una verdadera estructura labiada

hacia el interior.

La forma de la sección de las setas es

de un carácter constante en €. convolutus

y C. peruvianus, pero variable en C,

atlanticus, C. dichaeta y C. eibenii.

Un patrón de costas fue observado en

las valvas de C. eibenii, C. convolutus y

C. peruvianus. Evensen y Hasle (1975) lo

encontraron en algunas valvas de C.

dichaeta, Okuno (1956) en valvas de C.

atlanticus y Okuno (1970) en valvas de C.

danicus. Aunque al respecto no hay infor-

mación en las restantes especies del sub-

género encontradas a lo largo de la costa

chilena, la presencia de costas parece ser

una generalidad en este grupo, al menos

en las valvas menos silificadas.

Las diferencias morfológicas entre C.

atlanticus - C. dichaeta y C. convolutus -

C. peruvianus no son muy marcadas.

Evensen y Hasle (1975), al discutir la

morfología de los dos primeros taxa,

concluyen que las principales caracterís-

ticas de C. atlanticus son sus setas redon-

deadas en la base, luego cuadrangulares,

e incluso penta o hexagonales, mientras

que C. dichaeta, presentaría setas redon-

deadas en toda su extensión y un anillo de

“filamentous spines”” situado en el canto

valvar. Si bien es cierto es posible sepa-

rar dos grupos de individuos en el mate-

rial chileno basándose en la presencia o

ausencia de las prolongaciones silíceas

del canto valvar, no se encontraron setas

redondeadas en toda su extensión como

las descritas para C. dichaeta. Las prin-

cipales diferencias entre ambos taxa, se-

gún nuestras observaciones, se presentan

en la Tabla I. Urge realizar un estudio

más exhaustivo de ambas especies que

permita visualizar con mayor claridad

sus similitudes o diferencias.

C. convolutus y C. peruvianus pueden

ser diferenciados en forma relativamen-

te fácil por algunas de sus características

morfológicas, aunque esta separación es

más confusa si sólo se utilizan técnicas de

microscopía fotónica. En C. convolutus el

proceso labiado presenta una prolonga-

ción externa tubular, corta, mientras que

en C. peruvianus, ésta es cónica y más

larga. Como las setas en ambos taxa es-

tán muy próximas entre sí, el proceso se

sitúa algo excéntrico respecto al centro

de la valva. Una diferencia considerable

entre ambos taxa, pero sólo visible me-

diante microscopía electrónica, es la pre-

sencia en C. convolutus de prehensores

en la base de las setas intercalares. Has-

ta el momento no se conoce otra especie

que presente esta estructura. El mayor

tamaño de las espinas de las setas de C.

peruvianus y el generalmente mayor nú-

mero de líneas de poroides entre las cos-

tas, son caracteres que también sólo

pueden ser reconocibles mediante

microscopía electrónica. La observación

de largos filamentos de células permite

diferenciar en el LM, a C. convolutus de

C. peruvianus: Células solitarias, robus-

tas y de cintura reducida caracterizarían

a la última especie.

Especie prolongaciones orientación de la largo parte constricción

filamentosas en base de las setas exterior del en la base

el canto valvar proceso labia- del manto

do

C. atlanticus no oblicua 4- 5.6 yum notoria

C. dichaeta sí casi paralela al 9-23.5 um tenue

eje pervalvar

Tabla I. Algunas de las diferencias morfológicas más importantes entre C.

atlanticus y C. dichaeta.

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

La mayoría de los caracteres que per-

miten determinar las especies del subgé-

nero Phaeoceros en el LM, son en reali-

dad de escaso valor taxonómico. Es así

como en el material estudiado se observó

una amplia variación, entre otros, en la

forma y longitud de los filamentos, en el

largo y orientación de las setas, en la for-

ma de las aberturas y en el tamaño de la

cintura. Por el contrario, características

perfectamente definibles sólo mediante

el uso de técnicas de microscopía electró-

nica, relacionadas con la posición, forma

y largo del proceso labiado, y la estructu-

ra de las valvas y de las setas, permiten

delimitar con mayor exactitud las dife-

rentes especies.

Debido a la insuficiencia de material,

la información obtenida sobre algunos de

los taxa presentados es restringida; falta

además un estudio más detallado de la

estructura de la cintura, la cual podría

aportar, como en otros géneros, caracte-

res de gran valor sistemático.

AGRADECIMIENTOS

Los autores desean expresar su más

sincero reconocimiento a la Dirección de

Investigación de la Universidad de Con-

cepción por las facilidades otorgadas pa-

ra utilizar el Laboratorio de Microscopía

Electrónica. Agradecemos la ayuda del

personal de ese Laboratorio, en especial

a los Srs. Raúl Alarcón y Hugo Pacheco.

Agradecemos también a los siguientes

investigadores y curadores que facilita-

ron material para esta investigación:

Prof. Dr. Charles Reimer (Academy of

Natural Sciences, Philadelphia, U.S.A.);

Prof. Dr. G. Follman (Museum Stadt

Kassel, Deutschland); Prof. Dr. G. Hasle

(Dept. of Marine Biology and Limnology,

Norway); Prof. Dr. E. Balech (Argenti-

na) y Miss P.A. Sims (British Museum,

London).

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LISTA DE FIGURAS Y EXPLICACION

Figs. 1-5. Chaetoceros atlanticus.

Figs. 1-2, LM. Figs. 3-5, SEM. Escala: 1

um, excepto cuando se indica otro valor.

Fig. 1. Antartic Ocean, Pacific Sector, St.

30b, Eltanin XIII, June 4, 1964, PH, G. C.

91087. Escala: 10 um Fig. 2. Florida, Alli-

gator Harbor, PH, G. C. 45667. Escala: 10

um, Figs. 3-5. 56%19'S-67"09'W, St. 388,

16.4. 1930 (HENDEY 1937), BM, DIAT-

CONC 2350/2351, M-1463/1464.

Figs. 6-12. Chaetoceros dichaeta.

SeM"sESscala:/ 1 qm. - Higgs. .6-11,

5619'S-67”09"W, St. 388, 16.4. 1930 (HEN-

DEY 1937), BM, DIAT-CONC 2350/2351,

M-1463/1464. Fig. 12, 52%50'S-90W, Bra-

tegg Exped., St. 1, 13.12. 1947 (HASLE

1969, DIAT-CONC 2324/2325, M-1441. Fig.

76

6. Valva intercalar. Fig. 7. Célula termi-

nal y subterminal de un filamento. Figs.

8-9. Setas de valva terminal. Fig. 10. Ta-

maño, forma y posición del proceso la-

biado. Fig, 11. Setas de valvas intercala-

res. Fig. 12. Frústulo en vista conectival.

Figs. 13-22. Chaetoceros eibenii. Figs.

13-14, LM. Figs. 15-22, SEM. Escala: 1

um, excepto cuando se indica otro valor.

Fig. 13. Vista valvar; el proceso labiado

es evidente. 37%08'S-7310'"W, 28.3, 1977

(RIVERA y VALDEBENITO 1969),

DIAT-CONC M-659. Escala: 10 um. Fig.

14. Vista general de un filamento.

36%43'S-73%07"W, 29.10. 1965 (RIVERA

1969), DIAT-CONC M-1048. Escala 10 um.

Figs. 15-22, 23%50'S-70%42'W, 25.8. 1972,

Gayana, Bot. 41(1-2): 61-84, 1984 Koch y Rivera

DIAT-CONC 1072. Fig. 15. Valvas interca-

lares. Figs. 16-17. Proceso en valva ter-

minal. Fig. 18. Vista interior de valva ter-

minal con proceso labiado. Figs. 19-20.

Vista interna de valva intercalar. Fig. 21.

Seta terminal con sección transversal

cuadrangular. Fig. 22. Seta terminal con

sección transversal circular en la base,

luego hexagonal y pentagonal.

Figs. 23-29, Chaetoceros convolutus.

Figs. 23-24, LM. Figs. 25-29. SEM. Esca-

la: 1 um, excepto cuando se indica otro

valor. Figs. 23-24. Vista general de fila-

mentos. 42%07'S-73929'W, Junio 1978,

DIAT-CONC M-1128. Escala: 10 um. Fig.

25. Proceso de hipovalva intercalar. Note

los prehensores en las setas de epivalvas

intercalares. 43%09'S-73%44'W, 30.3 1978,

DIAT-CONC M-1214. Figs. 26-29,

45%12'S-75%28"W, 16.11. 1978, DIAT-CONC

M- 1360/1382. Fig. 26. Valvas intercala-

res, proceso labiado y prehensores; setas

con sección transversal circular, luego

cuadrangular. Fig. 27. Valva superior:

proceso y base de las setas. Fig. 28. Seta

de valva superior. Fig. 29. Detalle de se-

ta.

Figs. 30-35. Chaetoceros convolutus.

Figs. 30-32, SEM. Figs. 33-35, TEM. Esca-

la: 1 ym. Fig. 30. Setas de valvas infe-

riores intercalares con prehensores de

reducido tamaño. 42*%07'S-73%29'W, Junio

1978, DIAT-CONC M-1128. Fig. 31. Vista

interna de valva. Note una placa perfora-

da en la base del nacimiento de la seta.

33%02'S-71%37"W., 1968 (HASLE and

HEIMDAL 1970), IMBB, DIAT-CONC

M-852. Fig. 32. Proceso en valva inferior.

Note prehensores en setas de valva supe-

rior. 45%12'S-75%28"W, 16.11. 1978, DIAT-

GONC M-1360/1382. Figs. 33-35,

3302'S-71*37"W, 7.4.1964 (AVARIA 1965),

DIAT-CONC M-1112/1419. Fig. 33. Setas

con dos líneas de poroides entre las cos-

tas. Figs. 34-35. Vista interna de valvas.

Note ordenamiento de poroides y costas.

Figs. 36-45. Chaetoceros peruvianus.

Figs. 36-38, LM. Figs. 39-40, SEM. Figs.

17

41-45, TEM. Escala: 1¡ym, excepto cuan-

do se indica otro valor. Fig. 36.

33%02'S-71%37'W, 13.5. 1964 (AVARIA

1965), DIAT-CONC M1114. Escala: 10,

um. Fig. 37. 18%17'S-7316'W, 18.8. 1972,

Est. 10. DIAT-CONC M-1026/771. Escala:

10 um. Fig. 38. 39%03'S-74%03"W, 14.3. 1960,

Est. 89, DIAT-CONC M- 746. Escala: 10

um. Fig. 39. 52%50”S-90%”W, St. 1, 13.12.

1947, Brategg Exped. 1947-1948 (HASLE

1969), DIAT-CONC M-1441. Fig. 40. Vista

interior de valva mostrando abertura del

proceso. 23%49'S-71*16'W, 24.8. 1972,

DIAT-CONC M-789/835. Figs. 41-45,

2328'S-70%31"W, 24.9. 1963, DIAT-CONC

M-171/826. Figs. 41-42. Valva superior y

detalle del proceso labiado. Fig. 43. Man-

to de valva inferior; proceso entre las se-

tas. Fig. 44. Seta de valva superior con

engrosamiento a cierta distancia de su

base. Fig. 45. Valva superior.

Figs. 46-47. Chaetoceros peruvianus.

Variación del número de poroides entre

las costas de las setas. TEM. Escala: 1

um. 2328'S-70%31"W, 24.9. 1963, DIAT-

CONC M-171/826.

Fig. 48. Chaetoceros coarctatus. Fila-

mento con células de Vorticella sp. adhe-

ridas. LM. Escala: 10 um.

18"18'S-72*41"W, 18.8. 1972, DIAT-CONC

M-1025.

Figs. 49-52. Chaetoceros criophilus.

Fig. 49. Best. Norway, PH, Boyer Coll.

G-5-5, LM. Escala: 10 um. Figs. 50-52,

5258"S-71*28"W, 17.9. 1972, DIAT-CONC

M-927/1133. Fig. 50. Note suave constric-

ción en la base del manto valvar. SEM.

Escala: 1 ym. Fig. 51. Detalle del proce-

so. SEM. Escala: 1 um. Fig. 52. Seta.

SEM. Escala: 1 um.

Figs. 53-56. Chaetoceros danicus.

SEM. Escala: 1 ym. 1820'S-74*16"W, 8.8.

1972, DIAT-CONC M-1068. Fig. 53. Aspec-

to general. Fig. 54. Detalle del proceso.

Fig. 55. Base de la seta. Fig. 56. Parte

media de seta.

79

80

83

.

E wrrE

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984

ISSN 0016-5301

A COMPARISON OF EPIPHYTIC DIATOM ASSEMBLAGES

ATTACHED TO FILAMENTOUS ALGAE IN LOTIC

FRESHWATER HABITATS OF CHILE*

Oscar O. Parra**, Humberto González*** and Mariela González**

ABSTRACT

Lotic freshwater diatoms populations

growing on filamentous algae, e.g. Cla-

dophora glomerata (L.) Kuetz., Rhizoclo-

nium hieroglyphicum (Kuetz.) Stockm.,

Oedogonium spp., Hydrodictyon reticula-

tum (L.) Lagerh. and Vaucheria sp. are

examined.

A total of 55 taxa from 18 genera of

diatoms were determined. Information

on abundance and species composition of

the attached diatom assemblages and

specifity between host-algae and epiphy-

tes is also presented.

KEY WORDS: Diatoms, epiphyte, ta-

xonomy, lotic freshwaters, Chile.

RESUMEN

En este trabajo se estudió poblaciones

de diatomeas de hábitats dulceacuícolas

lóticos, que crecen como epífitas en algas

filamentosas, tales como Cladophora glo-

merata (L.) Kuetz., Rhizoclonium

hierogliphycum (Kuetz.) Stockm., Oedo-

gonium spp., Hydrodictyon reticulatum

(L.) Lagerh. y Vaucheria sp.

Se determinó un total de 55 taxa perte-

necientes a 18 géneros. Se entrega infor-

mación sobre la abundancia y composi-

ción de especies y sobre especificidad

entre alga hospedero y diatomeas epífi-

tas.

* This work was supported by grant N" 2.08.95 from the Direction of Research, University of Concepción, Chile.

** Departamento de Botánica, Universidad de Concepción, Casilla 2407, Concepción, Chile.

*=* Departamento de Biología y Tecnología del Mar, Pontificia Universidad Católica de Chile, Sede Talcahuano.

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

INTRODUCTION

Benthic algal communities are impor-

tant primary producers particularly in

lotic habitats and shallow lakes. Interest

on these algal communities, i.e., periphy-

ton, epiphyton, epilithon, methaphyton,

etc., from aquatic ecosystems is incre-

asing. Much has been done on taxonomy

and ecology of freshwater phytoplankton,

but far less is known about the taxonomy

and ecology of algal communities living

attached to submerged substrates (artifi-

cial and natural) and those free-living on

mud or sediment surfaces (Round, 1964;

Wetzel, 1975).

Most of the research on attached algae

has dealt with aquatic macrophyta or

using artificial surfaces, (Castenholz,

1961; Foerster and Schlichting 1965; Tip-

pet, 1970; Brown, 1976; Eminson, 1978;

Cattaneo and Kalff, 1978, 1979; Tuchman

and Blinn, 1979; Paul et al., 1977). Howe-

ver, relatively few studies have been ma-

de on micro-flora growing on freshwater

filamentous algae.

It is unquestionable, at the light field

data, that there is a very little specificity

in nature with regard to epiphytes and

substrate. The attachment of epiphytic

algae is in part related to the structure la-

yer of the vegetable host. It is also impor-

tant to point out that the mode of cell divi.-

sion, i.e., apical or intercalar cell divi-

sion, play a role, particularly in the

distribution of the epiphytes on the host

(Godward, 1937).

Data obtained from several studies on

epiphytic populations from different

macrophytes have indicated that epiphy-

tes are not specifically linked with parti-

cular host species. Moss (1976) and

Eminson and Moss (1980) reported that

the nature of the substrate has a little ef-

fect upon the epiphyte populations; this

seems to be largely determined by physi-

cal and chemical characteristics of the

water and not by the substrate to which

they are attached.

Hutchinson (1975) emphasized that ““it

is reasonable to suppose that the main

factors involved in regulating coloniza-

tion by epiphytes are hydrographic, no-

tably water level and water movements,

optical and chemical”.

Some filamentous algae have a large

amount of epiphytes (e.g., Cladophora

Spp.) but some other have few epiphytes

such as Zygnematales or Conjugales

(Chlorophyceae). Emison and Moss

(1980) showed that the Zygnematales ha-

ve evolved anti-epiphyton mechanisms,

(e.g., slimy surfaces) that discourage at-

tachment.

This paper examines the diatoms po-

pulations growing on the following fila-

mentous algae: Cladophora glomerata

(L). Kuetz., Rhizoclonium hieroglyphi-

cum (Kuetz.) Stockm., Oedogonium Spp.,

Hydrodictyon reticulatum (L.) Lagerh.,

and Vaucheria sp.

Nothing is known about benthic algae

of the Chilean freshwater bodies (Parra

and González, 1977). There is only one

study, on the matter but restricted to the

taxonomy and ecology of a population of

Stylococcus aureus Chodat growing as

epiphytes on several freshwater phy-

toplankters (Parra, 1975).

The purpose of this work is to obtain

preliminary information about (1) the

abundance and species composition of

the attached diatom assemblages and (2)

specificity between host and epiphytes.

MATERIAL AND METHODS

The material examined was collected at the following localities:

N? 1412 Estero Conchalí 31%52'S 71*”29'W; (4.10.1980): Cladophora

N? 1413 Estero Conchalí 31%52'S 7129 W; (4.10.1980): Vaucheria

N” 1416 Estero Millahue 31"37'S 7132"W; (4.10.1980): Cladophora

N? 1417 Estero Millahue 31%37'S 7132"W; (4.10.1980): Cladophora

N” 1418 Río Choapa 3135'S 71"33"W; (4.10.1980): Cladophora

N” 1419 Río Choapa 31%35'S 7133"W; (4.10.1980): Cladophora

86

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

N” 1423 Riachuelo 2907S 70"55'W; (4.10.1980) : Oedogonium

N” 1425 Estero cerca Río Limarí 3038'S 71"*33"W; (4.10.1980) : Rhizoclonium

N” 1451 Río Limarí 30%41'S 71"32"W; (8.10.1980) : Vaucheria

N” 1459 Estero Pullalli 3226'5S 7119 W; (8.10.1980) : Oedogonium

N” 1632 Río Angostura 3352'S 70%45'W; (2.12.1980) : Cladophora,

Hydrodictyon

N” 1637 Río Peuco 3357'S 7043"W; (2.12.1980) - Cladophora

N” 1643 Estero Tronco 33"58'S 70"44'W; (2.12.1980) : Oedogonium

N” 1647 Estero Rigoleno 34295 70"54'W; (3.12.1980) : Oedogonium

N” 1650 Estero Rigoleno 34295 7054'W; (3.12.1980) - Cladophora

N” 1667 Río Guaiquillo 36"05'S 71%48"W; (3.12.1980) - Cladophora,

Hydrodictyon

N” 1670 Río Lontué 35"03"S 71%15'W; (3.12.1980) : Cladophora

The samples were collected by means

of a glass container and then preserved in

40 formalin. In order to select algae fila-

ments with attached algae microflora,

the samples were examined in wet

mounts at a magnification of 400-800 x.

The preserved and isolated filaments

of each genera with their attached algal

flora were first studied by light micros-

copy, and then, its content was submited

to the process of oxidation. In order to re-

move non-epiphytic living material and

particles, the filaments were also suspen-

ded in distilled water, washed and shaken

up several times. After washing, the fila-

ments were included in conc. HCl to ob-

tain frustules separated from host fila-

ments.

Diatom slides were prepared by a

standard oxidation method (Hasle and

Fryxell 1970) and examined with a light

microscope (LM) Zeiss WL research

microscope equipped with phase and No-

marski optics and photomicrographic

equipment.

Cleaned frustules diatoms were air-

dried on coverslips and mounted in

Hyrax for light microscope observation

or mounted on an aluminium stub with a

silver conducting paint, gold coated and

viewed with a scanning electron micros-

cope (SEM). Cleaned frustules were also

placed on formvar coated grids for

viewing with the transmission electron

microscope (TEM).

Specimens were examined with a Phi-

lips EM 200 transmission electron

microscope (TEM) and an Autoscan-

Etec U-1 scanning electron microscope

87

(SEM) (Laboratorio de Microscopía

Electrónica, Universidad de Concepión).

The gold coater was made with an Ed-

wards S-150 coater.

All material examined such as Hyrax

slides, cleaned material, SEM stubs, and

TEM grids are housed at Ficoteca-CONC

collection, University of Concepción.

Descriptions of the Hosts

Cladophora have branched filaments,

with cylindrical cells, usually sessiles

and attached to the substrate; the cells

present a non-muscilaginous stratified

rough walls; the whole thallus commonly

becomes coated with epiphytes (Figs.

175-182). Rhizoclonium have a non or

very scarcy branching filaments with

cylindrical cells; the cells have a strati-

fied rough wall, similar to that of Cla-

dophora, and its cell division is mostly in-

tercalary. Oedogonium present

unbranched filaments with cylindrical

cells, generally free floating in the matu-

re condition. The cell wall is usually not

conspicuosly thickened, seems to be ho-

mogeneous, and with a scanty formation

of muscilage; cell division is either ter-

minal or intercalar. The production of

this thin and muscilaginous layer and the

concomitant intercalary cell division

would be the factors that discourage the

attachment of the epiphytes flora on

Oedogonium. Hydrodictyon have a free-

floating coenobium with cylindrical cells

to form a meshwork in which most of the

interspaces are bounded by five or six

cells. Vaucheria shows an unseptable tu-

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

bular coenocyte with a very sparce or

fairly abundant branching, apical growth

and a relatively thin cell wall.

TAXONOMIC PART

The supra-species taxonomic entities

are marranged in "accordance to

Simonsen's system (1979). The diatom

species within the genera are arranged

alphabetically.

CLASS BACILLARIOPHYCEAE

ORDER PENNALES

SUBORDER ARAPHIDINAE

Family DIATOMACEAE

Genus Ceratoneis Grun.

Ceratoneis arcus Ehr. var. arcus

(Figs. 1,2)

Length 40-65 um; width 6-7 ym; striae

13-14 in 10 um at the center to 16-18 in 10

um at the ends of the valve.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

nium.

Genus Diatoma Bory

Diatoma tenue Ag. var. tenue (Figs.

3,4)

Length 16-25 um; width 3.5-5 um; cos-

tae 5-9 in 10 um; striae 18-22 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora, Oedogo-

nium and Vaucheria.

Genus Fragilaria Lyngbye

Fragilaria brevistriata Grun. var.

brevistriata (Figs. 5,6)

Length 17-20 um; width 4.5-5 um;

striae 13-14 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora

Fragilaria construens (Ehr.) Grun.

var. venter (Ehr.) Grun (Fig. 7)

Length 5-6 um; width 4 um; striae 10

in 10 ym.

Epiphytic on Cladophora.

Fragilaria pinnata Ehr. var. pinnata

(Figs. 8,9)

88

Length 10-11 um; width 4-5yum; striae

12-13 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Fragilaria vaucheriae (Kuetz.) Pe-

ters. var. vaucheriae (Figs. 10-14)

Length 16-39 um; width 3-5 yum; striae

12-16 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Vaucheria.

Oedogo-

Genus Synedra Ehr.

Synedra acus Kuetz. var. acus (Fig.

13)

Length 90-120 um; width 5-6 yum; striae

12-14 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Synedra fasciculata (Ag.) Kuetz.

var. fasciculata (Figs. 16,17)

Length 120-130 ym; width 4-5 yum;

striae 12-13 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora, Rhizoclo-

nium and Vaucheria.

Synedra pulchella Ralfs ex Kuetz.

var. pulchella (Fig. 18)

Length 85-115 ym; width 5-6 um; striae

12-16 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Synedra rumpens Kuetz. var fami-

liaris (Kuetz.) Hust. (Figs. 19,20)

Lengtr 35-51 yum; width 3-4 ym; striae

16-19 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

NUM.

Synedra ulna (Nitz.) Ehr. var. ulna

(Figs. 21-26)

Length 120-270 ym; width 7-8 um;

striae 9-10 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora, Oedogo-

nium, Hydrodictyon and Vaucheria.

Family ACHNANTHACEAE

Genus Achnanthes Bory

Achnanthes hungarica (Grun.)

Grun. var. hungarica (Figs. 27-30)

Length 16-22 ym; width 7-7.5 um;

striae 16-20 in 10 um on both valves.

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra el al.

Epiphytic on Cladophora and Vauche-

ria.

Achnanthes lanceolata (Bréb.)

Grun. var. lanceolata (Figs. 31-36)

Length 12-17 um; width 5-6 um; raphe

valve striae 15-16 in 10 um; rapheless val-

ve striae 12-14 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Vaucheria.

Oedogo-

Achnanthes lanceolata var. dubia

Grunow (Figs. 37-40)

Length 13-17 um; width 5-6 um; raphe

valve striae 12-14 in 10 um; rapheless val-

ve striae 14-15 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Vaucheria.

Oedogo-

Achnanthes microcephala (Kuetz.)

Grun. var. microcephala (Figs. 41-50)

Length 12-25 um; width 2-3 um; raphe

valve striae 26-28 in 10 um at the ends;

rapheless valve striae ca. 24-26 in 10 um

at the center, ca.32 in 10 um at the ends.

Epiphytic on Cladophora and Vauche-

710.

Achnanthes saxonica Krasske var.

saxonica (Figs. 51-54)

Length 9-13 um; width 2.5-3.5 um;

raphe valve striae 24-27 in 10 um; raphe-

less valve striae 13-14 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

num.

Genus Cocconeis Ehr.

Cocconeis placentula Ebhr.

euglypta (Ehr.) Cl. (Figs. 55-60)

Length 19-27 im; width 11-15 um;

raphe valve with 17-18 striae in 10 um;

rapheless valve with 20-22 striae in 10 um.

Epiphytic on Cladophora, Oedogo-

nium and Vaucheria.

Var.

Cocconeis scutellum Ehr. var. scu-

tellum (Fig. 61)

Length 35-45 um; width 28-36 um;

raphe valve with 6-7 striae in 10 um;

rapheless valve with 7 striae in 10 um.

Epiphytic on Cladophora, Rhizoclo-

nium and Oedogonium.

8 9

Family NAVICULACEAE

Genus Amphora Ehr.

Amphora perpusilla (Grun.) Grun.

var. perpusilla (Figs. 62, 63).

Length 9-19 um; width 3-5 um; striae

17-19 in 10 ym.

Epiphytic on Cladophora.

Amphora veneta Kuetz. var. veneta

(Figs. 64-72).

Length 13-30 um; width 4-6 um; striae

18-24 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium, Oedogonium, Hydrodictyon

Vaucheria.

Rhizoclo-

and

Genus Cymbella C.A. Agardh

Cymbella affinis Kuetz. var. affinis

(Figs. 73-74).

Length 33-35 um; width 8-10 ym; dor-

sal striae 10-11 in 10 um; ventral striae

9-11 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Cymbella minuta Hilse ex Rabh. var.

silesiaca (Bleisch. ex. Rabh.) Reim.

(Figs. 75-80).

Length 15-28 in 10 um; width 6.5-9 um;

striae 11-15 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Vaucheria.

Oedogo-

Cymbella sinuata Greg. (Fig. 81).

Length 17-21 yum; width 5yum; striae 12

in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

nium.

Cymbella tumida (Bréb. ex Kuetz.)

V.H. var. tumida (Fig. 85).

Length 45-60 um; width 16-18 um;

striae 8-12 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Cymbella turgidula Grun. var. turgíi-

dula (Figs. 82-84).

Length 28-34 um; width 8-9 um; dorsal

striae 9-11 in 10 um; ventral striae 10-12 in

10 um.

Epiphytic on Cladophora and Vauche-

ria.

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

Genus Frustulia Rabh.

Frustulia vulgaris (Thwaites) De Toni

var. vulgaris (Figs. 86-87).

Length 50-52 um; width 9-10 um; striae

25-28 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Vaucheria.

Oedogo-

Genus Gomphonema Ehr.

Gomphonema acuminatum Ehr. var.

acuminatum (Figs. 88-90).

Length 31-59 yum; width 9-12 um; striae

9-11 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Gomphonema affine Kuetz. var. affi-

ne (Figs. 91-92).

Length 40-56 um; width 8-10 um; striae

10-11 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Gomphonema gracile Ehr. emend.

V,. H. var. gracile (Fig. 93).

Length 28-40 um; width 5.5-8 um;

striae 13-14 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Gomphonema parvulum Kuetz. var.

parvulum (Figs. 94-100).

Length 17-24 um; width 6-9 um; striae

12-16 in 10 ym.

Epiphytic on Cladophora, Hydrodict-

yon and Oedogonium.

Gomphonema subclavatum (Grun.)

Grun. var. subclavatum (Fig. 101).

Length 30-34 um; width 7-8 um; striae

10-12 um in 10 um.

Epiphytic on Cladophora, Hydrodict-

yon and Vaucheria.

Gomphonema subclavatum var.

commutatum (Grun.) A. Mayer (Fig.

102).

Length 38-41 ym; width 7-8um; striae

10-11 in 10 um.

Epiphytic on Oedogonium.

Gomphonema subclavatum var.

mexicanum (Grun.) Patr. (Figs.

1 h

09

103-

90

Length 29-32 um; width 7-8 um; striae

11-13 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Hydro-

dictyon.

Gomphonema tenellum Kuetz. var.

tenellum (Figs. 110-112).

Length 18-30 um; width 4.5-6 yum;

striae 10-11 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Vaucheria.

Oedogo-

Gomphonema truncatum Ehr. var.

truncatum (Figs. 113-117).

Length 40-52 um; width 10-11 um;

striae 9-11 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Vauche-

PU.

Genus Gomphoneis Cleve

Gomphoneis herculeana (Ehr.) Cl.

var. robusta (Grun.) Cl. (Figs. 118-119).

Length 70-85 um; width 22-24 um;

striae 11-12 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Hydrodictyon.

Oedogo-

Genus Navicula Bory

Navicula cryptocephala Kuetz. var.

veneta (Kuetz.) Rabh. (Figs. 120-123).

Length 16.5-26 um; width 5-6 um;

striae 13-17 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

NUM.

Navicula mutica Kuetz. var. mutica

(Figs. 124-125).

Length 30-32 um; width 7-8 um; striae

16-18 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

nium.

Navicula pupula Kuetz. var. pupula

(Fig. 126).

Length 21-28 um; width 7.5-8.5 um;

striae 16-18 in 10 um at the center, ca. 24

at the ends.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Hydrodictyon.

Oedogo-

Navicula salinarum Grun. var. inter-

media (Grun.) Cl. (Figs. 127-128).

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra el al.

Length 35-48 yum; width 8 um; striae

10-12 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

nium.

Navicula afí. tripunctata (0.F.

Miller) Bory. (Fig. 129).

Length 42 um; width 8 um; striae 11 in

10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Navicula viridula (Kuetz.) Kuetz.

var. avenacea (Bréb. ex Grun.) V.H.

(Figs. 130-132).

Length 53-57.5 um; width 9-10 um;

striae 10-12 in 10 um at the center.

Epiphytic on Cladophora, Oedogo-

nium, Hydrodictyon and Vaucheria.

Genus Rhoicosphenia Grun.

Rhoicosphenia curvata (Kuetz.)

Grun. var. curvata. (Figs. 133-134).

Length 30-35 um; width 5-6 um; striae

10-12 in 10 um at the center, 17-18 in 10 um

at the ends.

Epiphytic on Oedogonium.

Family EPITHEMIACEAE

Genus Epithemia Bréb.

Epithemia adnata (Kuetz.) Bréb.

var. adnata. (Figs. 135-137).

Length 65-90 um; width 8-11 um; cos-

tae 3-6 in 10 um; rows of alveoli between

costae 4-5

Epiphytic on Cladophora and Vauche-

ria.

Epithemia adnata var. proboscidea

(Kuetz.) Patr. (Figs. 138-141).

Length 48-56 um; width 9-10 um; cos-

tae 4-6 in 10 um; rows of alveoli 11-14 in 10

um.

Epiphytic on Cladophora, Rhizoclo-

nium and Vaucheria.

Epithemia sorex Kuetz. var. sorex

(Figs. 142-144).

Length 38-40 um; width 9-10 um; cos-

tae 8-10 in 10 um; rows of alveoli 12-15 in

10 um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Vaucheria.

Oedogo-

91

Genus Rhopalodia O. Miller

Rhopalodia gibba (Ehr.) O. Múller

var. ventricosa (Kuetz.) H. et M. Perag.

(Figs. 145-148).

Length 65-80 um; width 17-19 um; cos-

tae 6-8 in 10 um; striae 12-14 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora.

Rhopalodia musculus (Kuetz.) O.

Múller var. musculus. (Fig. 149).

Length 28-30 um; width 7-8um:; costae

4-5 in 10 um; striae ca. on 14 in 10 um.

Epiphytic in Cladophora.

Family NITZSCHIACEAE

Genus Hantzschia Grunow

Hantzschia amphioxys (Ehr.) Grun.

(Fig. 150).

Length 32-35 ym; width 7-8 um; keel

punctae 6-7 in 10 um; striae 19-20 in 10

um.

Epiphytic on Cladophora.

Genus Nitzschia Hassal!

Nitzschia amphibia Grun. (Figs. 151-

1)

Length 21-34 um; width 3.5-51um; keel

punctae 6-8 in 10m; striae 15-16 in 10 im.

Epiphytic on Cladophora, Oedogo-

nium, Hydrodictyon and Vaucheria.

Nitzschia frustulum (Kuetz.) Grun.

(Figs. 156-160).

Length 12-39 um; width 3.5-4.5 um; ke-

el punctae 10-12 in 10 um; striae 18-25 in 10

um.

Epiphytic on Cladophora,

nium and Hydrodictyon.

Oedogo-

Nitzschia aff. inconspicus Grun.

(Figs. 161-162).

Length 5-7 um; width 3-4 ym; keel

punctae 12-13 in 10 um; striae ca. 24 in 10

um.

Epiphytic on Cladophora.

Nitzschia palea (Kuetz.) W. Smith

(Figs. 163-164).

Length 18-30 yum; width 3-4 ym; keel

punctae 12-16 in 10 um; striae ca. 40 in 10

um.

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

Epiphytic on Cladophora, Oedogo-

nium, Hydrodictyon and Vaucheria.

Family SURIRELLACEAE

Genus Surirella Turpin

Surirella angusta Kuetz. (Fig. 168).

Length 22-24 um; width 8-9 um; costae

6-7 in 10 um; striae ca. 20 in 10 um.

Epiphytic on Oedogonium.

Surirella aff. ovata Kuetz. (Figs. 165-

167).

Length 27-33 ym; width 10-11 um; cos-

tae 6-7 in 10 um; striae 18-22 in 10 um.

Epiphytic on Cladophora and Oedogo-

NIUM.

CONCLUSIONS

It is important to point out that the re-

sults of this investigation are based on a

small number of samples (17) from thir-

teen different localities; however, it is al-

so relevant to indicate that the thirteen

localities represent quite different lotics

habitats from the central to the north

part of Chile. Tables I and II summarize

the result obtained in this study.

A total of 55 taxa belonging to 18 gene-

ra of diatoms were determined.

The most common and abundant

epiphytic diatoms were Achnanthes lan-

ceolata var. lanceolata, Amphora veneta

var. veneta, Cocconeis placentula var.

euglypta, Fragilaria vaucheriae var.

vaucheriae, Gomphonema parvulum

var. parvulum, Nitzschia amphibia, Nitz-

schia frustulum, Nitzschia palea, Sy-

nedra fasciculata var. fasciculata and

Synedra ulna var. ulna (see Table N? 1).

The highest richness of species were

found on Cladophora glomerata which

had 52 taxa of a whole of 55 determined

taxa; followed by Oedogonium spp. (31).

The lowest richness of species occurred

on Rhizoclonium hieroglyphicum (6) (see

Table N” Il).

Achnanthes, Cymbella, Gomphone-

ma, Navicula and Synedra were the ge-

nera which presented the highest number

of taxa (see Table N* 1).

Only three taxa were common to all

studied genera: i.e., Amphora veneta

var. veneta, Nitzschia amphibia and

Nitzschia palea. Synedra ulna occurred

in four and as the former with a high fre-

quency and abundance.

92

Contrarily, 18taxa were found present

on one genus, particulary on Cladophora

and four of them with a relatively high

frequency, i.e., Amphora perpusilla var.

perpusilla, Cymbella affinis var. affinis,

Gomphonema acuminatum Var. acumi-

natum, Gomphonema affine var. affine.

On the other hand, the genus Rhopalo-

dia with R. gibba var. ventricosa and R.

musculus var. musculus, was present

only on Cladophora and the genus

Rhoicosphenia with R. curvata occurred

only on Oedogonium.

It is interesting to compare the species

composition of filamentous algae from si-

milar sampling sites, e.g., samples N”

1412 with Cladophora and N” 1413 with

Vaucheria from Estero Concha!i; N” 1632

from Río Angostura with Cladophora and

Hydrodictyon; N” 1647 and N” 1650 with

Oedogonium and Cladophora respecti-

vely from Estero Rigoleno and sample N”

1667 from Río Guaiquillo where Cla-

dophora and Hydrodictyon were growing.

In Estero Conchali (N” 1412 and N”

1413) Cladophora presented 8 epiphytic

diatoms, being Synedra fasciculata

var.fasciculata and Epithemia adnata

the most abundant; on the other hand on

Vaucheria occurred 15 taxa of diatoms

with an abundance of Epithemia adnata

var. adnata, Synedra fasciculata var.

fasciculata and Achnanthes hungarica.

Thus, in Estero Conchali Cladophora and

Vaucheria shared 7 taxa from a total of 16

presented as epiphytes on both genera

and the same taxa which were abundant.

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

In Río Angostura (N” 1632), Cladopho-

ra and Hydrodictyon shared 5 taxa from

a whole of 8 taxa presented as epiphytes

on both genera, among which the most

abundant were: Amphora veneta var. ve-

neta, Gomphonema parvulum var. par-

vulum and Gomphonema subclavatum

var. subclavatum.

Oedogonium and Cladophora, which

were growing in Estero Rigoleno (N” 1647

and N” 1650) presented 19 taxa of epiphy-

tic diatoms, six of them were shared and

in contrast to previous findings the abun-

dant species were different, i¡.e.,

Gomphonema tenellum var. tenellum

and Gomphonema herculeana var. robus-

ta were dominant on Cladophora and Sy-

nedra ulna var. ulna, Nitzschia palea, Su-

rirella aff. ovata and Gomphonema par-

vulum var. parvulum were dominant on

ODedogonium.

Finally, in sample N” 1667, where 14

taxa were found growing on Cladophora

and Hydrodictyon, seven taxa were pre-

sent on both of them but the other seven

taxa were only present on Cladophora.

They shared only one dominant species,

1.€., Amphora veneta var. veneta, but

not the other dominant,Synedra ulna var.

ulna and the subdominants Gomphonema

parvulum Var. parvulum, Nitzschia

amphibia and Nitzschia palea.

The results of this preliminary investi-

gation reveal that the host-epiphyte spe-

cificity, referred to the association of fila-

mentous algae and attached diatoms is

questionable and further research is ne-

eded on the matter.

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EXPLANATION OF FIGURES

Figs. 1,2 Ceratoneis arcus Ehr. var. ar-

cus.; valve view (LM).

Figs. 3,4 Diatoma tenue Ag. var. tenue.

3 Valve view (SEM)

4 Valve view (LM)

Figs. 5,6 Fragilaria brevistriata Grun.

var. brevistriata; valve view (LM).

Fig. 7 Fragilaria construens (Ehr.)

Grun. var. venter (Ehr.) Grun.; val.

ve view (LM).

Figs. 8,9 Fragilaria pinnata Ehr. var.

pinnata; valve view (LM).

Figs. 10-14 Fragilaria vaucheriae

(Kuetz.) Peters. var. vaucheriae.

10,11 valve views (LM)

12,14 valve views (SEM)

Fig. 15 Synedra acus Kuetz. var. acus;

valve view (LM)

Figs. 16,17 Synedra fasciculata (Ag.)

Kuetz. var. fasciculata.

16 valve view (LM)

17 valve view (SEM)

Fig. 18 Synedra pulchella Ralfs ex

Kuetz. var. pulchella;, valve view

(LM)

Figs. 19,20 Synedra rumpens Kuetz. var.

familiaris (Kuetz.) Hust.

94

19 valve view (LM)

20 valve view (TEM)

Figs. 21-26 Synedra ulna (Nitz.) Ehr.

21,22 valve views (LM)

23 central area (LM)

24 valve view (TEM)

25 internal polar view (SEM)

26 internal central area view

(SEM)

Figs. 27-30 Achnanthes hungarica Grun.

27,28 valve views (LM)

29 valve view (SEM)

30 valve view (SEM)

Figs. 31-36 Achnanthes lanceolata

(Bréb.) Grun. var. lanceolata.

31,32 raphe valve views (LM)

33,35 rapheless valve views (LM)

36 rapheless valve view (SEM)

Figs. 37-40 Achnanthes lanceolata var.

dubia Grun.

37,38 raphe and rapheless valve views

(LM)

39 internal rapheless valve view

(TEM)

40 internal polar raphe valve view

(SEM)

Figs: 41-47 4 cha ntmess

microcephala(Kuetz.) Grun. var.

microcephala

41 raphe valve view (LM)

42,43,46 raphe valve views (SEM)

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

44,45 raphe valve views (TEM)

47 central area view (TEM)

Figs. 48-50 Achnanthes microcephala

(Kuetz.) Grun. var. microcephala

48,49 rapheless valve views (TEM)

50 internal polar rapheless valve

view (TEM)

Figs. 52-54 Achnanthes saxonica Krass-

ke var. saxonica

52 raphe valve view (TEM)

53 internal raphe valve view (SEM)

54 external raphe valve view (SEM)

Figs. 55-60 Cocconeis placentula Ehr.

var. euglypta (Ehr.) Cleve

55,56 raphe and rapheless valve views

(LM)

0 internal raphe valve view (SEM)

58 external raphe valve view (SEM)

59 external rapheless valve view

(SEM)

60 internal rapheless valve view

(SEM

Figs. 61 Cocconeis scutellum Ehr. var.

scutellum; rapheless valve view (LM)

Figs. 62,63 Amphora perpusilla (Grun.)

Grun. var perpusilla

62 valve view (LM)

63 valve view (TEM)

Figs. 64-72 Amphora veneta Kuetz. var.

veneta

64,66 valve views (LM)

67 girdle view (LM)

68,69 valve view (SEM)

70 valve view (TEM)

al girdle view (SEM)

72 external central raphe endings

(SEM)

Figs. 73,74 Cymbella affinis Kuetz. var.

affinis; valve views (LM)

Figs. 75-80 Cymbella minuta Hilse ex

Rabh. var. silesiaca (Bleisch.)

75,77 valve views (LM)

78 valve view (TEM)

95

79 external central raphe endings

(TEM) |

80 polar raphe ending (TEM)

Fig. 81 Cymbella sinuata Greg.; valve

view (LM)

Figs. 82-84 Cymbella turgidula Grun.

var. turgidula

82 valve view (LM)

83,84 valve view (SEM)

Fig. 85 Cymbella tumida (Bréb. ex.

Kuetz.) V.H. var. tumida; valve view

(LM).

Figs. 86,87 Frustulia vulgaris (Thw.) De

Toni var. vulgaris

86 valve view (LM)

87 valve view (SEM)

Figs. 88-90 Gomphonema acuminatum

Ehr. var. acuminatum

88 external central area (TEM)

89 valve view (LM)

90 valve view (TEM)

Figs. 91,92 Gomphonema affine Kuetz.

var. affine; valve views (LM)

Fig. 93 Gomphonema gracile Ehr.

emend V.H. var. gracile; valve view

(LM)

Figs. 94-100 Gomphonema parvulum

Kuetz. var parvulum; valve views

(LM).

Fig. 101 Gomphonema subclavatum

Grun. var. subclavatum; valve view

(LM)

Fig. 102 Gomphonema subclavatum

var. commutatum (Grun.) A. Mayer;

valve view (LM)

Figs. 103-109 Gomphonema subclava-

tum var. mexicanum (Grun.) Patr.

103,104 valve views (LM)

105 external valve view (SEM)

106 internal valve view (SEM)

107 girdle view (SEM)

108 external central area view

(SEM)

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

109

(SEM).

internal central area view

Figs. 110-112 Gomphonema

Kuetz. var. tenellum.

110,111 valve views (LM).

ula internal valve view (SEM)

tenellum

Figs. 113-117 Gomphonema

Ehr. var. truncatum

truncatum

113,114 valve views (LM)

115 external central area view

(TEM)

116 valve view (SEM)

117 valve view (TEM).

Figs. 118,119 Gomphonema herculeana

(Ehr.) Cleve var. robusta. (Grun.) Cle-

ve; valve views (LM).

Figs. 120-123 Navicula cryptocephala

Kuetz. var. veneta (Kuetz.) Rabh.

120,121 valve views (LM)

122,123 external valve views (SEM)

Figs. 124,125 Navicula mutica

var. mutica; valve views (LM).

Kuetz.

Fig. 126 Navicula pupula Kuetz. var,.

pupula; valve view (LM)

Figs. 127,128 Navicula salinarum Grun.

var. intermedia (Grun.) Cleve; valve

views (LM)

Fig. 129 Navicula aff. tripunctata (O.F.

Miller) Bory; valve view (LM)

Figs. 130-132 Navicula viridula Kuetz.

var. avenacea (Bréb. ex. Grun.) V.H.

129,131 valve views (LM)

132 external valve view (SEM)

Figs. 133,134 Rhoicosphenia

(Kuetz.) Grun.

133 valve view (LM)

134 girdle view (LM)

curvata

Figs. 135-137 Epithemia adnata (Kuetz.)

Bréb. var. adnata

135,136 valve views (LM)

137 valve view (SEM)

96

Figs. 138-141 Epithemia adnata var. pro-

boscidea (Kuetz.) Patr.

138,139 valve views (LM)

140 central valve view (SEM)

141 valve view (SEM)

Figs. 142-144 Epithemia

Var. sorex

142 valve view (LM)

143,144 internal valve view (SEM)

sorex Kuetz.

Figs. 145-148 Rhopalodia gibba (Ehr.) O.

Miller var. ventricosa.

145, valve view (LM)

146,147 valve views (SEM)

148 external polar valve view

(SEM)

Fig. 149 Rhopalodia musculus (Kuetz.)

O. Miller var. musculus; valve view

(LM)

Fig. 150 Hantzschia «umphioxis (Ehr.)

Grun.; valve view (LM)

Figs. 151-155 Nitzschia amphibia Grun.;

151 valve view (LM)

152,153 external valve views (SEM)

154 internal valve view (SEM)

155 valve view (TEM)

Figs. 156-160 Niteschia

(Kuetz.) Grun.

156,157 valve views (LM)

158 internal valve view (SEM)

159,160 "valve views (TEM)

frustulum

Figs. 161,162 Nitzschia aff. inconspicua

Grun.; valve views (LM)

Figs. 163,164 Niteschia palea

W. Smith; valve views (LM)

(Kuetz.)

Figs. 165-167 Surirella aff. ovata Kuetz.

165,166 valve views (LM)

167, valve view (SEM)

Fig. 168 Surirella angusta Kuetz.; valve

view (LM)

Fig. 169 Gomphonema tenellum Kuetz.

var. tenellum on Cladophora glomera-

ta (SEM)

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984 Parra et al.

Fig. 170 Gomphonema sp. in girdle view

with a short stalk on Cladophora glo-

merata (SEM)

Fig. 171 Gomphonema truncatum with a

short stalk on Cladophora glomerata

(SEM)

Fig. 172 Gomphonema truncatum with a

stalk on Oedogonium sp. (SEM)

Fig. 173 Groups of Synedra sp. on a

branch of Cladophora glomerata

(SEM)

Fig. 174 Attachment of Synedra sp. and

some Gomphonema sp. on Cladophora

glomerata (SEM)

Fig. 175 Synedra sp. on Cladophora glo-

merata (LM)

Fig. 176 Bushe of Synedra sp. on Cla-

dophora glomerata (LM)

97

Fig. 177 Epithemia adnata var. probos-

cidea on Cladophora glomerata (LM)

Fig. 178 Rhoicosphenia curvata on Cla-

dophora glomerata (LM)

Fig. 179 Gomphonema

truncatum on

Cladophora glomerata (LM)

Fig. 180 Diatom assemblage on Cla-

dophora glomerata (LM)

Fig. 181 Cocconeis placentula var. eu-

glypta on Cladophora glomerata (LM)

Fig. 182 Gomphonema truncatum with

stalks and bushes of Synedra sp. on

Cladophora glomerata (LM)

Fig. 183 Amphora veneta on Hydrodict-

yon reticulatum (LM)

17)

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Parra et al.

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114

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984

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85-117, 1984

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115

Parra et al.

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984

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Parra et al.

Gayana, Bot. 41(1-2): 85-117, 1984

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EFECTO DE LA SALINIDAD EN ELCRECIMIENTO DE

TETRASPOROFITOS JUVENILES DE GRACILARIA VERRUCOSA

(HUDSON) PAPENFUSS (RHODOPHYTA, GIGARTINALES)*

EFFECT OF SALINITY ON GROWTH OF TETRASPORELINGS OF

GRACILARIA VERRUCOSA (HUDSON) PAPENFUSS (RHODOPHYTA, GIGARTINALES)*:

Mauricio A. Muñoz**, Héctor Romo** y Krisler Alveal**

RESUMEN

Se investigó el efecto de la salinidad

sobre el crecimiento de tetrasporofitos

juveniles de Gracilaria verrucosa (Hud-

son) Papenfuss y se compararon las res-

puestas de plantas colectadas en ambien-

tes estuarino, submareal e intermareal

(pozas de mareas y niveles expuestos a

emersión). Las plantas toleraron un ran-

go entre 5 y 55%. de salinidad, aunque la

sobrevivencia en 5 y 15%4 fue baja debido

a la lisis de esporas. La tolerancia a las

condiciones hiposmóticas aumentó al di-

luir el agua de mar con agua de río. Los

embriones del intermareal crecieron óp-

timamente en 15, 25 y 35%2. Los

embriones de pozas de mareas tuvieron

un crecimiento máximo en 15 y 25%,/. Las

plantas submareales mostraron un creci-

miento óptimo en 25%. y los embriones

estuarinos en 35%. de salinidad. Los re-

sultados evidencian que Gracilaria

verrucosa posee la capacidad de adapta-

ción a diferentes regímenes de salinidad.

ABSTRACT

The effect of salinity on growth of

tetrasporelings of Gracilaria verrucosa

(Hudson) Papenfuss was investigated un-

der laboratory conditions. The sporelings

were obtained in culture of carpospores

from mature plant collected in the four

following habitats: estuary, subtidal ma-

rine levels, intertidal levels and tida! po-

ols.

The sporelings tolerated a range from

5 to 55%.0 salinity, althought some experi.-

ments of 5 and 15%, salinity show low sur-

vival of plants due to lysis of carpospores.

Dilution of seawater with water of river

shows that tolerance at such salinities

was increased. Sporelings developed

from carpospores of intertidal plants had

an optimal growth at 15, 25 and 35%o,

Sporelings from plants of tidal pools

show maximal growth at 15 and 25%o0,

whilst those from subtidal and estuarine

plants grew better at 25 and 35%, salinity,

respectively. The results suggest that

Gracilaria verrucosa has capacity for

adaptation to salinity variations.

KEY WORDS: Gracilaria verrucosa, Sa-

linity, growth, sporelings.

* Proyecto 2.08.91. Financiado por la Dirección de Investigación de la Universidad de Concepción.

** Departamento de Oceanología, Universidad de Concepción. Casilla 2407, Concepción, Chile.

Gayana, Bot. 41(1-2): 119-125, 1984

Muñoz, et al.

INTRODUCCION

Gracilaria verrucosa es considerada

una especie eurihalina (Causey et. al.,

1946) y ocupa ambientes marinos y es-

tuarinos, tanto en niveles intermareales

como submareales (Romo et. al., 1979).

Las plantas adultas toleran un rango de

salinidad entre 5 y 55%/ y Muestran una

actividad máxima de crecimiento o foto-

síntesis en salinidades de 15%, (Huang,

1980 fide Chiang, 1981); 25%, (Kim, 1970);

30%. (Dawes et. al., 1978 fide Dawes,

1981) o 25-35%, (Causey et. al., 1946).

Variaciones intraespecíficas de tole-

rancia a la salinidad han sido demostra-

das para Gracilaria verrucosa por Dawes

et. al., 1978 (fide Dawes, 1981), al compa-

rar una población de un pantano salino

(0-15%, de salinidad) con otra existente

en un manglar (15-30%, de salinidad).

Los autores observaron en la primera

población actividad fotosintética baja en

todas las salinidades experimentales

(0-50%/) y una gran resistencia al agua

destilada. En cambio, Gracilaria del

manglar mostró una tasa alta de fotosín-

tesis desde 10 a 40%, de salinidad y murió

al ser mantenida en agua destilada.

Kim (1970) menciona que al igual que

la planta adulta, las esporas de Gracila-

ría verrucosa sobreviven dentro de un

amplio rango de salinidad y que 25%. de

salinidad favorecería el desarrollo del

embrión. Sin embargo, la magnitud del

crecimiento puede estar relacionada con

la salinidad en la cual se formaron las es-

poras (Sheath y Cole, 1978).

El objetivo de este trabajo es cuantifi-

car el efecto de la salinidad sobre el cre-

cimiento de tetrasporofitos juveniles de

Gracilaria verrucosa y comparar las res-

puestas de esporas colectadas en ambien-

tes con diferentes regímenes de salini-

dad.

MATERIALES Y METODOS

Plantas cistocárpicas se colectaron en

mayo de 1982 en las siguientes localida-

des y ambientes: zona intermareal y po-

zas de mareas en Bahía Concepción

(3641'S; 73%02'W), niveles submareales

en Bahía San Vicente (36"46'S; 73"08"W)

y ambientes estuarinos en el estero Len-

ga (36%46'S; 73"10'W). La salinidad su-

perficial en Bahía Concepción fluctúa de

ca. 28 a 35%0 (Ahumada y Chuecas, 1979)

y en niveles submareales en Bahía San

Vicente fluctúa de ca. 30 a 35%, (Della-

rossa et. al., 1980).

Las algas se mantuvieron 48 hrs. en un

acuario con agua de mar circulante. Pos-

teriormente, trozos de talos con cistocar-

pos maduros se limpiaron con agua de

mar y agar-agar al 1%. Las carpósporas

se obtuvieron mecánicamente en cápsu-

las con agua de mar filtrada. Mediante

micropipetas se tomaron al azar grupos

de 100-150 esporas y se depositaron en

cubreobjetos de 18x18 mm. que se mantu-

vieron durante una noche en una cámara

de asentamiento, según la técnica descri-

ta por Edwards (1977). Al día siguiente,

se escogieron aleatoriamente dos cubre-

120

objetos para cada tratamiento y se depo-

sitaron en cápsulas Petri pequeñas con 10

ml. de medio con las salinidades experi-

mentales

Las salinidades de 5, 15 y 25 %, se ob-

tuvieron diluyendo agua de mar filtrada

(35%.,) con agua desionizada (ad); otra

serie semejante se obtuvo diluyendo con

agua de río filtrada (ar), cuyo efecto se

estudió en plantas estuarinas. Las salini-

dades de 45 y 55%, se lograron con-

centrando agua de mar filtrada mediante

evaporación a 50-55"C y luego diluyéndo-

la con agua desionizada. La salinidad se

midió con un salinómetro de inducción

Beckman RS-7C.

Las algas se incubaron durante 7 días

a 65 + 5uE/m2%. s (tubos fluorescentes

Philips y General Electric), 15 + 1”—C y un

fotoperíodo de 12-12 hrs. La mayoría de

los cultivos fueron unialgales y sólo en ca-

sos aislados existió contaminación por

diatomeas. Sin embargo, éstas se presen-

taron en cantidades insignificantes, por

lo que su influencia no fue considerada.

Como variable de respuesta se eligió el

Gayana, Bot. 41(1-2): 119-125, 1984 Muñoz, et al.

área del embrión, que se estimó median»

te proyección con cámara clara sobre pa-

pel (con un aumento de 400 veces) y pos-

terior pesaje en una balanza de precisión.

El tamaño de muestra aleatoria varió de

15 a 34. Las áreas se transformaron a

diámetros y estos valores se analizaron

estadísticamente mediante análisis de

varianza de un factor y pruebas de Tu-

key, a un nivel de 0.05. Previamente se

usó una transformación logarítmica

(log) para homogenizar las varianzas

(Prueba de Bartlett). Las tasas de creci-

miento diario se calcularon según la fór-

mula:

TCD = 100 [In (Nt -N;>)t' ]

donde TCD = Tasa de crecimiento diario

como porcentaje de incremento por día,

N, = diámetro inicial (ym) y Nt =

diámetro final (ym) después de t días.

RESULTADOS Y DISCUSION

Después del período de incubación se

observaron tetrasporofitos vivos en todos

los tratamientos experimentales. Sin em-

bargo, en la salinidad 5%. (ad) la sobre-

vivencia fue inferior al 1% debido a la li-

sis de esporas que ocurrió en las prime-

ras horas de cultivo. Un fenómeno seme-

jante sufrieron en 15%, de salinidad las

carpósporas de ejemplares submareales,

hecho que impidió estimar crecimiento

en estos experimentos.

Los diámetros promedio iniciales de

las esporas de los 4 ambientes no difieren

significativamente entre sí (Tabla 1).

TABLA I. Resumen de los análisis de varianza para el efecto de la salinidad en tetrasporofitos juve-

niles y diámetro inicial de esporas.

FUENTE DE VARIACION

tratamientos

Intermareales 4

Pozas de mareas 4

Submareales 2

Estuarinas 7

Diámetro inicial esporas

VALORES F P

error

123 10.45 < 0.005

116 70.62 < 0.005

57 43.40 < 0.005

235 43.72 < 0.005

55 151 << 0.010

Los juveniles originados de plantas in-

termareales mostraron un crecimiento

máximo y estadísticamente semejante

en los medios con 15, 25 y 35%, de salini-

121

dad, y con respecto a los otros grupos de

algas, la mayor tolerancia a la salinidad

de 55%0. (Figs. 1 y 2; Tabla IT).

Gayana, Bot. 41(1-2): 119-125, 1984

Estuarinas

. . . . O,

Tasa de crecimiento diario (%)

un

o

0 5 15 25

Muñoz, et al.

Intermareales

+

Pozas mareas

de

Estuarimas (ad)

Submareales

35 45 55

salinidad (1/45)

oo

Fig. 1. Gracilaria verrucosa. Tasas de crecimiento diario de tetrasporofitos juveniles, después de 7

días de cultivo.

El crecimiento óptimo de los juveniles

recolectados en pozas de mareas se pro-

dujo en las salinidades de 15 y 25%oLa ta-

sa de crecimiento en 35%o difiere signifi-

cativamente del crecimiento medido en

25%0/.Las tasas de crecimiento diario dis-

minuyen rápidamente en las salinidades

superiores (Fig.1; Tabla II). Las pozas de

mareas consideradas en este trabajo de-

saparecen con las pleamares diarias, lo

que permite suponer que durante el año

la salinidad fluctuaría de valores norma-

les a bajos, principalmente.

Los juveniles originados de esporas de

individuos submareales tuvieron el ma-

122

yor crecimiento en la salinidad de 25%o.

En comparación con las otras pobla-

ciones de plantas estudiadas, las esporas

del ambiente submareal son más sen-

sibles a la salinidad de 15%./, concentra-

ción en la que no sobrevivieron. Dellaros-

sa (comunicación personal) ha medido

las mayores tasas de fotosíntesis en talos

adultos de G. verrucosa submareal de

Bahía San Vicente en el rango 25-300, de

salinidad, aspecto coincidente con los re-

sultados de este experimento.

Aunque no fue posible demostrarlo es-

tadísticamente, los embriones de Gracíi-

laria verrucosa submareal aparentan te-

Gayana, Bot. 41(1-2): 119-125, 1984 Muñoz, et al.

INTERMAREAL POZAS DE MAREA

100%.

I5Lo

5 1525 35 45 55 5 115 2 35 05055

Salinidad (%,)

SUBMAREAL ESTUARINO

100%,

54152535 45,55 55,15 2525.:25/3545. 53

Salinidad (%.)

Fig. 2. Gracilaria verrucosa. Crecimiento de tetrasporofitos juveniles expresado como porcentaje de

los crecimientos máximos (punteado, dilución con agua de rio).

123

Gayana, Bot. 41(1-2): 119-125, 1984

Muñoz, et al.

TABLA II. Resultados de las pruebas de Tukey aplicadas a los datos de crecimiento en función de la

salinidad. (1) intermareal; (P) pozas de marea; (S) submareal; (E) estuario; (+) diferencia

significativa (p < 0.05); (—) diferencia no significativa (p > 0.05).

25 35 45

IPSE IPSE IPSE

15 =+ + A ++ —

25 — +++ ++ +

35 ++ +

45

55

5(*)

15(*)

55 5 15” 257

PS E E E E

++ + - = -

++++ - — —

++++ + + -

=+ + . . -

+ + +

+ -

(*): dilución con agua de río.

ner tasas de crecimiento diario menores

que los embriones intermareales, de po-

zas de mareas y de estuario. En estos 3

últimos grupos, las velocidades de creci.-

miento son más homogéneas entre sí

(Fig. 1).

Las plantas del estuario Lenga pre-

sentaron un crecimiento máximo en 35%.0

de salinidad. La tasa de crecimiento en

25%. de salinidad fue levemente inferior.

No se detectó diferencia significativa

entre los niveles 25%. (ad) y 25%, (ar), ni

tampoco entre 15%. (ad) y 15% (ar). Se

esperaba un mayor crecimiento en los

medios con agua de río debido al aporte

de nutrientes. Sin embargo, las especies

del género Gracilaria parecen caracteri-

zarse por niveles bajos de saturación de

nutrientes (De Boer, 1979; Santelices y

Fonck, 1979). En cambio se observó una

notable densidad de embriones en el tra-

tamiento 5%, (ar) de salinidad y cuya

causa es probablemente la acción de

iones calcio, que según Gessner y

Schramm (1971), reducen la permeabili-

dad celular y aumentan la tolerancia a

condiciones hiposmóticas (Figs. 1 y 2;

Tabla 11).

124

Los resultados indican que el creci-

miento de los tetrasporofitos juveniles de

Gracilaria verrucosa es función de la sa-

linidad y muy semejante a la respuesta

de plantas adultas, con un rango de tole-

rancia de 5 a 55%), de salinidad y creci-

miento óptimo entre 15 y 35%, de salini-

dad.

La respuesta de crecimiento de los

embriones de G. verrucosa considerados

en este trabajo posee características que

pueden ser relacionadas con regímenes

de salinidad del ambiente de origen, e.g.,

las algas intermareales tienen el rango

más amplio de actividad óptima y la ma-

yor tolerancia a la salinidad de 55%p lo

que se relaciona bien con un nivel inter-

mareal donde la salinidad fluctúa cons-

tantemente debido a la evaporación y liu-

vias.

Las plantas colectadas en un ambien-

te submareal mostraron, a través de las

esporas, menor tolerancia a las salinida-

des bajas. Estos resultados evidencian en

Gracilaria verrucosa la capacidad de

adaptación a diferentes regímenes de sa-

linidad. Diferencias intraespecíficas de

resistencia a la salinidad han sido repor-

Gayana, Bot. 41(1-2): 119-125, 1984

tadas para Menbranoptera alata (Biebl.

1962 fide Santelices 1977), poblaciones

sublitorales y estuarinas de Eugomontia

sacculata (Wilkinson, 1974) y Bostrychia

radicans y Caloglossa leprieurii (Y arish

Muñoz, et al.

et. al., 1979). Esta variabilidad debe

quizás considerarse al usar respuestas

ecofisiológicas en taxonomía de macroal-

gas

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, , Po

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Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984

ISSN 0016-5301

EL EFECTO DE LA PODA EN SOBREVIVENCIA, TAMAÑO Y

RENDIMIENTO DE MACROCYSTIS PYRIFERA (L.) AG.

(LESSONIACEAE) DE ISLA NAVARINO. CHILE*

HARVEST EFFECT ON SURVIVAL, SIZE AND YIELD OF MACROCYSTIS

PYRIFERA (L.) AG. (LESSONIACEAE) OF NAVARINO ISLAND. CHILE

Héctor Romo**, Krisler Alveal** y Marcela Avila***

RESUMEN

Se estudió el efecto de poda sobre la

sobrevivencia, rendimiento y fluc-

tuaciones en tamaño en plantas indivi-

duales de Macrocystis pyrifera (L.) J.

Agardh. Las plantas fueron cortadas a 1

m bajo el dosel superficial, 1.5 m sobre

el grampón e inmediatamente sobre el

grampón. Se detectó una elevada sobre-

vivencia con un crecimiento y rendimien-

to normal en las plantas cortadas a 1 m

bajo el dosel, mientras que aquéllas más

drásticamente podadas mostraron alta

mortalidad y bajo rendimiento después

de once meses de estudio. La fluctuación

en tamaño de las plantas observada du-

rante el año fue interpretada como debi-

do al reemplazo de frondas senescentes

por frondas juveniles.

Proyecto Biología de Macrocystis, financiado por la Armada de Chile.

ABSTRACT

The effects of harvest on survival, fi-

nal yield and fluctuation in size of indivi-

dual plants of Macrocystis pyrifera (L.)

J. Agardh have been examined. The

plants were cut 1m below the cannopy,

1.5m above the holdfast and on the sur-

face of the holdfast. High survivorship,

normal regrowth and yield was detected

in plants cut 1 m under the cannopy,

whilst more drastically harvested plants

showed high mortality and low final yield

after eleven months. The fluctuation on

size of plants during the year was in-

terpreted as the replacement of senes-

cent by young fronds.

KEY WORDS: Harvest, kelp,

Macrocystis, plant survival, size, yield.

* Departamento de Oceanología, Universidad de Concepción. Casilla N” 2407, Concepción, Chile.

*** Departamento de Biología Ambiental y Poblaciones, Pontificia Universidad Católica de Chile. Casilla N” 114-D, Santiago, Chile.

Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984 Romo, el al.

INTRODUCCION

El alga parda gigante, Macrocystis

pyrifera, es un conspicuo habitante de los

archipiélagos del sur de Chile, entre Chi-

loé y el Cabo de Hornos. En esta área for-

ma densos bosques submarinos que se

distribuyen en un cordón de aproximada-

mente 30 a 40 m. de ancho y en el cual las

mayores densidades generalmente están

determinadas por la existencia de fondos

duros continuos, que en general corres-

ponde a la isóbata de 20 m. (Santelices y

Ojeda, 1983; SERCOTEC, 1975).

Estos aspectos han llevado a pensar

en la factibilidad de explotar comercial-

mente estas poblaciones. Sin embargo

(Santelices y Castilla, com. personal) su-

gieren que la explotación de estos cintu-

rones costeros alcanzaría una producción

anual limitada a sólo 5 ton. métricas de

peso por hectárea (cosechando hasta 1 m.

de profundidad bajo el dosel), rendimien-

to que es muy inferior a los valores entre

16 y 30 ton. reportadas por North (1979)

en los bosques submarinos comerciales

de esta misma especie en California.

El objetivo de este estudio fue evaluar

la sobrevivencia, el crecimiento y el ren-

dimiento de plantas individuales de

Macrocystis ante podas efectuadas a dis-

tintos niveles en Puerto Toro (Isla Nava-

rino) entre septiembre de 1979 y julio de

1980.

MATERIALES Y METODOS

Los estudios se efectuaron en una

población de Macrocystis pyrifera que

crece a profundidades entre 4 - 12 m. en la

localidad de Puerto Toro (55% 05'S; 67”

05'W) y ubicada en la costa oriental de

Isla Navarino (Fig. 1).

Los experimentos de poda se efec-

tuaron en cuatro grupos de esporofitos

creciendo in situ. El primer grupo de 9

plantas fue cortado a 1 m bajo el dosel.

En el segundo grupo, 8 plantas fueron

cortadas a 1.5 m sobre el grampón, en el

tercero 9 plantas fueron cortadas inme-

diatamente sobre el grampón eliminando

por lo tanto todos los estipes y un cuarto

grupo de 10 plantas no manipuladas se

dejó como control.

Todos los grampones de cada grupo de

plantas fueron unidos por una cuerda de

polietileno y marcados con etiquetas

plásticas numeradas.

Los experimentos de corte a 1.5 m

sobre el grampón y el control fueron ini-

ciados en septiembre de 1979, mientras

que aquéllos de corte a 1 m bajo el dosel y

de corte a nivel de grampón comenzaron

en diciembre de 1979. Las condiciones de

experimentación se muestran en Tabla I.

Los cambios que siguieron a la remo-

ción de frondas fueron monitoreados a in-

tervalos de tres o cuatro meses, durante

11 meses. El registro de plantas sobrevi-

vientes y las mediciones de talla máxima

de las plantas se efectuaron mediante bu-

ceo autónomo.

La altura de las plantas fue medida

con huincha plástica en cm desde el

grampón hasta el ápice de la fronda más

grande. Al término de experimentos, to-

das las plantas sobrevivientes fueron des-

pegadas del sustrato y pesadas (kg peso

húmedo) con una balanza de torsión.

En este trabajo se usó la nomenclatu-

ra de North (1971) para denominar las di-

ferentes partes anatómicas de Macrocys-

tis. Según este autor, una planta está

compuesta por el grampón y sus frondas;

una fronda corresponde al estipe más sus

“hojas” y cada “hoja” corresponde a una

lámina, un aerocisto y el pedicelo o por-

ción que la une al estipe.

RESULTADOS

Sobrevivencia de Macrocystis en ex-

perimentos de poda.

Los resultados indicaron que la sobre-

vivencia de Macrocystis decrece a medi-

Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984 Romo, el al.

ENDS

| ' | a

0 /

Territorio Chileno

An e . > o?

tarti1c 529)

/

CORDON

DE

MACROCYSTIS

PUERTO - |

50m o

TORO

ES drea estudiada

Fig. 1. Lugar de estudio. La flecha en el recuadro superior indica Isla Navarino.

129

Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984 Romo, et al.

TABLA I. Condiciones de experimentación en experimentos de cortes a distintas alturas en M. pyri-

fera.

NIVEL DE CORTE INICIO

Control 31 ago. 79

1.5 m sobre el grampón 31 ago. 79

1 m bajo la superficie del dosel 16 dic. 79

Nivel del grampón 16 dic. 79

ICONTROL IHCONTROL THICONTROL N" DE PLAN-

TAS

13 dic.79 19abr.80 22jul.80 10

13 dic. 19 “19abr:80 22 jul 80 49

19 abr. 80 22 jul. 80 — 8

19 abr. 80 22 jul. 80 — 9

da que se incrementa la profundidad del

corte. El efecto de la severidad en el cor-

te se muestra en la Tabla I. Los resulta-

dos fueron evaluados por medio de un

análisis de chi cuadrado con la correc-

ción de Yates aplicado a grupos de plan-

tas experimentales y al grupo control.

La remoción del dosel superficial no

afectó la sobrevivencia de las plantas,

pues casi el 80% de los esporofitos poda-

dos a 1 m bajo el dosel aún permanecían

vivos al término de los 11 meses de estu-

dio.

En cambio las plantas más afectadas

fueron las cortadas a nivel del grampón,

las que mostraron alrededor de 78% de

mortalidad después de tres meses de la

manipulación.

Los grampones de los esporofitos

muertos mostraban hapterios completa-

mente necrosados y en proceso de

desprendimiento del sustrato. A pesar de

la severidad en el corte (todos los estipes

eliminados a nivel del grampón), dos

plantas permanecieron vivas hasta el fi-

nal del experimento y mostraban una

apariencia normal, con frondas regene-

radas y una alta tasa de crecimiento.

Las plantas cortadas a 1.5 m sobre el

grampón sufrieron, al igual que el grupo

anterior, una fuerte mortalidad, perma-

neciendo hasta el final solamente el 20%

de ellas. Sin embargo, tal mortalidad fue,

a corto plazo, menos pronunciada que en

130

las plantas más drásticamente tratadas.

Por ejemplo el monitoreo efectuado tres

meses después de la cosecha reveló un

90% de sobrevivencia (Tabla IT). Sin em-

bargo, los sobrevivientes de este grupo

mostraron malas condiciones, excep-

tuando dos plantas (N” 141 y 142), las

cuales tuvieron un buen crecimiento y

formación de nuevos hapterios. En el se-

gundo período de controles (siete meses

después de la remoción inicial de fron-

das) se detectó en este grupo una alta

mortalidad, similar a la observada en las

plantas cortadas a nivel del grampón,

con la excepción de las dos plantas ya

mencionadas, las cuales exhibieron un

crecimiento normal.

Efectos del corte en la fluctuación de

tallas de las plantas.

En todos los grupos experimentales

las plantas mostraron fluctuaciones irre-

gulares en la talla durante todo el período

de observaciones. Inclusive, esta fluc-

tuación fue evidente en las plantas del

grupo control (Fig. 2). Seis plantas de es-

te grupo mostraron un incremento en ta-

maño desde septiembre a diciembre y un

posterior decrecimiento hasta julio. El

grupo de plantas cortadas a 1 m bajo el

dosel mostró similar comportamiento a

las del control, así como también una cla-

Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984 Romo, et al.

TABLA Il. Sobrevivencia de las plantas de M. pyrifera cortadas a diferentes alturas de la fronda

(NI.= experimentos no instalados el primer mes; (*) diferencia no significativa con respecto

al control).

1 m bajo dosel

2 m sobre el grampón

Sobre el grampón

IMES TI MES VIIMES XIMES

NI 9(*) 7(*) 7(*)

8(*) 7(*) 2 2

NI 9(*) 2 2

10 10 9 9

ra tendencia a recuperar las tallas ini-

ciales.

Los sobrevivientes de los otros dos gru-

pos (Fig. 2) más drásticamente podados

mostraron también la misma tendencia

ya mencionada, pero con una nítida dis-

minución en altura de septiembre a di.-

ciembre y/o abril, con la excepción del

ejemplar N?* 99 (planta podada a nivel del

grampón), la cual nunca evidenció cam-

bios marcados durante todo el período de

recuperación.

Efecto del corte sobre el rendimiento

Las mediciones de rendimiento al final

de los experimentos (evaluado como el

peso húmedo del conjunto de plantas)

mostraron tendencias similares a los re-

sultados de sobrevivencia (Fig. 3). El

grupo de plantas cortadas a 1 m bajo el

dosel mostró un alto rendimiento en la co-

secha final, el cual no fue significativa-

mente diferente al control. Obviamente

los grupos de plantas cortadas a 1.5 Mm

sobre el grampón y a nivel de éste, que

sufrieron una alta mortalidad, tuvieron

solamente un rendimiento final de ca. 6%

del peso inicial teórico (Fig. 3).

DISCUSION

De los resultados de respuesta de

Macrocystis a la poda, se desprende que,

de acuerdo a lo esperado, tanto la sobre-

vivencia como el rendimiento disminuye-

ron a medida que la altura del corte se

efectúa a niveles más bajos en las fron-

das maduras, entendiéndose por frondas

maduras aquellas que han alcanzado la

altura suficiente como para formar parte

del dosel en la superficie y que no presen-

tan aún señales de senescencia en sus es-

tipes y “hojas”. Esto se refleja en la alta

131

sobrevivencia al final del estudio del gru-

po podadc a 1 m bajo la superficie en rela-

ción al control y en la baja sobrevivencia

de los grupos cortados a 1.5 m por sobre

el grampón y a nivel del grampón. Al res-

pecto, Clendenning (1968) establece que

os “bosques” de Macrocystis del sur de

California pueden soportar varios cortes

al año, siempre que éstos se efectúen en

el dosel superficial y Davis (1968) indica

que la cosecha por medios mecanizados

en Ya costa de California está autorizada

Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984 Romo, el al.

135 134 158

147 146 145 144 143 142 141 140

JUL

p ABR

DIC

106 1187 1120 133

PLANTA N?

Fig. 2. Composición de tamaño en los grupos de plantas sobrevivientes en experimentos de poda. A:

control; B: corte a 1 m bajo el dosel; C: corte a 1.5 m sobre el grampón; D: corte a nivel del

grampón.

132

Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984 Romo, et a

¿sl Y ll

l.

Peso inicial. de cada

experimento

Peso final del control

Peso final corte a 1 m

bajo la superficie

EN SS E

gl Peso final corte a 1,5 m

e sobre el grampon

Peso final corte a nivel

del grampon

”

Fig. 3. Rendimiento de plantas de Macrocystis al final del experimento de poda.

por el Estado para realizarse hasta pro-

fundidades de 4 pies (1.32 m) y “bosques”

de interés comercial no se cosechan con

intensidad mayor de 3 ó 4 veces en el año.

Con respecto a los grupos de plantas

más drásticamente podados (1.5 m sobre

el grampón y a nivel de éste), es intere-

sante hacer notar que aunque la sobrevi.-

vencia al final del estudio fue muy simi.-

lar (alrededor del 220%), ésta fue muy di.-

ferente en los primeros meses después

del corte (80% y 220%, respectivamente).

Esto está indicando que las frondas que

no fueron afectadas por el corte (frondas

menores del 1.5 m de altura) en su gran

mayoría no tuvieron la vitalidad suficien-

te para volver a formar el dosel superior

y, por lo tanto, murieron antes del final

del experimento. Se supone que la reduc-

ción de la radiación lumínica, generada

por el dosel de las plantas vecinas al gru-

po experimental, explicaría la mortali-

dad de estos individuos. En forma simi-

lar, Santelices y Ojeda (1983) determina-

ron que el efecto del dosel genera una

fuerte competencia intraespecífica y es

133

la responsable del escaso reclutamiento

de esporofitos juveniles en áreas donde el

dosel es denso.

La translocación de sustancias elabo-

radas por la fotosíntesis desde los niveles

superiores de la fronda hacia los niveles

basales es bastante importante como ha

sido demostrado por Parker (1963, 1965 y

1971) y por Lobban (1975) para Macrocys-

tis pyrifera de California y sugerida tam-

bién por Sargent y Lantrip (1952). Estos

procesos son muy importantes para ase-

gurar la vitalidad de la planta, ya que es

necesario que los productos de la fotosín-

tesis lleguen rápidamente hasta las por-

ciones inferiores del estipe, donde nutren

tanto a los estipes jóvenes en crecimiento

como también a las esporofilas ubicadas

en la base de la planta, ya que a esa pro-

fundidad (ca 15 m) la iluminación sería

insuficiente para que el balance entre fo-

tosíntesis y respiración sea positivo.

Este proceso de nutrición de frondas ju-

veniles, a partir de sustancias fotoasimi-

ladas en los niveles próximos a la superfi.-

cie, está explicando las diferencias en-

Gayana, Bot. 41(1-2): 127-135, 1984 Romo, et al.

contradas en el rendimiento de grupos de

plantas podadas a niveles superiores con

respecto al evaluado en las plantas poda-

das en los estratos más bajos.

Con respecto a la fluctuación de tallas

de las plantas sobrevivientes en los dis-

tintos grupos experimentales, se en-

contró que ésta en general retornaba a

sus valores orginales (rango de va-

riaciones individuales) a medida que

transcurría el tiempo de experimenta-

ción. Esta respuesta concuerda con lo es-

tablecido por North (1968), quien dice que

la planta de Macrocystis está compuesta

de frondas de variadas longitudes y que

constantemente está reemplazando fron-

das seniles (estipes y “hojas” con una ca-

pacidad fotosintética atenuada) con el

crecimiento de nuevas frondas juveniles.

Asimismo Gerard (1976), Lobban (1978) y

North (1979) establecen que la longevi-

dad máxima de frondas maduras es de

alrededor de 6 meses, y después de este

tiempo envejecen y mueren. Es decir,

que aunque la planta como un todo puede

tener una vida de 3 a 5 años (North, 1968),

durante este lapso existe un continuo y

rápido recambio de frondas. Este recam-

bio de frondas podemos suponerlo muy

activo y en nuestros experimentos

podríamos considerar que durante este

tiempo de experimentación (10.9 y 7.3

meses) hubo por lo menos un recambio

de frondas en las plantas sobrevivientes.

Mediciones de crecimiento en ápices de

frondas que llegaban a la superficie no

incluidas en este estudio, indican que este

crecimiento es variable y dependería de

la edad de la fronda, es decir, los valores

de tasa de crecimiento más altos en-

contrados (v.g. 2,2 y 2,7 cm./día para la

temporada verano-otoño y otoño-

invierno) correspondería a frondas jóve-

nes con una alta eficiencia fotosintetiza-

dora y aquellos valores bajos (alrededor

de 0,6 cm./día para ambas temporadas)

corresponderían a frondas seniles o pró-

ximas a ese estado. Este razonamiento

está sostenido por lo indicado por North

(1979); quien estableció que la longevi-

dad máxima para las frondas de

Macrocystis es de alrededor de 6 meses.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo es parte de un programa

de estudios de la Biología y Utilización de

macrocystis pyrifera en Chile Austral. El

trabajo fue financiado a través de un con-

venio de investigación entre la Armada

de Chile y la Pontificia Universidad Cató-

lica de Chile y realizado en el Laboratorio.

de Algas del Departamento de Oceanolo-

gía de la Universidad de Concepción.

Nuestros agradecimientos para el Sr.

JOSE CID L., por su valiosa colaboración

en terreno.

BIBLIOGRAFIA

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ting effects on canopy invertebrates and

on kelp plants. In: Utilization of kelp bed

resources in Southern California. Ed. by

W.J. North and C.H. Hubbs. Dept. Fish

and Game. Fish Bull., 139: 218-254.

DAVIS, D.H. 1968. Statistical analysis

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and sportfishing in the California kelp

beds. In: Utilization of kelp bed resources

in Southern California. Ed. by W.J. North

and C.H. Hubbs Dept . Fish and Game.

FishiBull:;-139: 151-212;

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GERARD, V.A. 1976. Some aspects of

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kelp forest in Monterrey Bay, California.

Ph.D. Thesis. Santa Cruz, 173 pp.

LOBBAN, C.S. 1975. Translocation in

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death of the Macrocystis sporophyte

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of kelp-bed resources in Southern Califor-

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Dept. Fish and Game Fish Bull., 139: 223-

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the giant kelp Macrocystis. 1 Rates, di-

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minar de algunos bancos de Macrocystis

pyrifera (huiro) en el Estrecho de Ma-

gallanes e Isla Navarino. Servicio de Co-

operación Técnica, División Regional

Magallanes, 22 pp.

COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS

COUTE, A. et G. TELL, 1981. Ultrastruc-

ture de la paroi cellulaire des Desmidiées

au microscope électronique a balayage.

Beihefte zur Nova Hedwigia, Bd. 68, 228

PO L0Z:B1S:

Esta obra consiste en un estudio efec-

tuado con microscopía electrónica de

barrido a representantes de la familia

Desmidiaceae. Un total de 19 géneros y

182 especies, variedades y formas, la ma-

yoría de ellas de distribución mundial,

fueron seleccionadas para su estudio, se

describen 11 nuevos taxa (2 especies, 7

variedades y 2 formas) y se proponen 3

nuevas combinaciones. La obra está divi-

dida en 7 trabajos comprendiendo ellos

los siguientes géneros y taxones:

I, Euastrum (28 taxones); II, Closterium

(2) Docidium (2), Penium (2), Pleuro-

taenium (11), Tetmemorus (1), Triploce-

ra (4), 01M, Cosmarium (37); IV, Micras-

terias (18); V, Staurastrum (42); VI,

Bourrellyodemus (1), Ichtyocercus (1),

Staurodesmus (8), Xanthidium (16); VII,

Bambusina (1), Desmidium (4), Phyma-

todocis (1), Sphaerozosma (1) y Spon-

dylosium (2).

Cada taxon estudiado está ilustrado con

numerosas fotomicrografías que repre-

136

sentan diferentes ángulos de estos orga-

nismos, se incorporan también vistas de

la estructura y ornamentación de la pa-

red celular. Los autores efectúan comen.-

tarios sobre la morfología celular y de los

diferentes tipos ultraestructurales de la

pared celular.

Gran parte de los ficólogos consideran a

la familia Desmidiaceae como uno de los

grupos algológicos que presenta una plas-

ticidad y belleza extraordinaria, en espe-

cial la ornamentación de la pared celu-

lar. Esta obra refleja gran parte de los

atributos del grupo biológico comentado

y al mismo tiempo estimula a continuar

esta tarea. Por otra parte, se demuestra

la capacidad de los autores para conju-

gar el conocimiento derivado de la obser-

vación con la microscopía fotónica y los

nuevos obtenidos, por el uso de la micros-

copía electrónica.

Por último, hay que mencionar que, si

bien la fecha de publicación del presente

trabajo indica el año 1981, éste estuvo dis-

ponible sólo a fines de 1983.

OSCAR O. PARRA

Departamento de Botánica

Universidad de Concepción

10.

11.

1

13.

14.

15.

16.

17.

18.

19.

20.

21.

REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

La revista Gayana, dedicada a Claudio Gay, es el órgano oficial de la Editorial de la Universidad de Con-

cepción, Chile, para la publicación de resultados de investigaciones originales en el área de las Ciencias

Naturales. Está compuesta de las series Botánica, Zoología y Miscelánea.

Las dos primeras aparecen en la forma de un volumen anual compuesto por cuatro números; Gayana Mis-

celánea es aperiódica.

Gayana recibe trabajos realizados por académicos de la Universidad de Concepción y ocasionalmente los

de otros investigadores nacionales o extranjeros de indudable prestigio, elaborados según las normas del

presente reglamento. La recepción es permanente.

Gayana acepta trabajos escritos en idioma español o inglés. La publicación en otros idiomas deberá ser

consultada previamente al Director.

El manuscrito debe ser entregado en triplicado; una de las copias llevará las figuras originales.

El Director de la revista, asesorado por el Comité de Publicación, se reserva el derecho de aceptar o

rechazar el manuscrito.

El manuscrito será enviado a pares para su revisión técnica.

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definitiva. Si ello fuere imposible o dificultoso la corrección será realizada por el Director.

Los nombres científicos y las locuciones latinas serán las únicas que irán subrayadas en el texto. La pri-

mera vez que se cite un organismo deberá hacerse con su nombre científico completo (género, especie y

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das en otros sistemas, las abreviaturas correspondientes deben ser definidas en el texto.

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hay más de dos autores todos los nombres serán citados en la primera mención [Ej.: Smith, J.G., P.J. Jo-

nes and W.E. Williams (1981); las referencias posteriores serán: Smith et al. 1981)].

La bibliografía incluirá todas y sólo las referencias citadas en el texto, dispuestas por orden alfabético del

apellido del primer autor, sin número que la anteceda. La literatura botánica será citada según el B-P-H

(Botánico-Periodicum-Huntianum) y la zoológica según el Style Manual of Biological Journals.

La nomenclatura de los trabajos botánicos y zoológicos se regirá por sus respectivos códigos.

Las ilustraciones y tablas deben ser adecuadas para, una vez reducidas, ocupar un ancho de 66 mm (una

columna) ó 137 mm (dos columnas) y una longitud no superior a 215 mm incluido el espacio del texto

explicativo.

Los dibujos y tablas deben ser realizados con tinta china sobre papel diamante y deben llevar una escala

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Las figuras se numerarán en orden correlativo con números arábicos. Las tablas de igual modo con nú-

meros romanos. Cada tabla debe llevar un título descriptivo en la parte superior.

Las fotografías se considerarán figuras para su numeración. Serán en blanco y negro, brillantes, de grano

fino y buen contraste y deben ser acompañadas de una escala para la determinación del aumento.

En el reverso de las láminas originales se deberá indicar el nombre del autor, título del trabajo y número

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Adjunto al manuscrito se entregará en forma secuencial las explicaciones de cada una de las figuras.

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men, Abstract, Key Words, Introducción, Materiales y Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones,

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nombre genérico o específico se indicará el rango sistemático inmediatamente superior.

Si por alguna circunstancia especial el trabajo debe ser publicado en forma diferente a las disposiciones

anteriores, el autor deberá exponer su petición al Director antes de enviarlo.

137

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BOTANICA VOLUMEN 41 NUMEROS 1-2 1984

CONTENIDO/CONTENTS

KALIN ARROYO, M.T., MARTICORENA, C. y C. VILLAGRAN. La flora de la Cordillera

de Los Andes en el área de Laguna Grande y Chica, III Región, Chile..................o.o...ooo... 3

The flora of the Cordillera de Los Andes in the area of Laguna Grande and

Laguna Chica, III Región, Chile.

MARTICORENA, C. y M.T. KALIN ARROYO. El género Bartsia L. (Scrophulariaceae) en Chile.... 47

The genus Bartsia L. (Scrophulariaceae) in Chile.

MATTHEl, O. El género Muhlenbergia Schreber (Poaceae) en Chile ...............ooooooocoooco.o.. 53

The genus Muhlenbergia Schreber (Poaceae) in Chile.

KOCH, P. y P. RIVERA. Contribución al conocimiento de las diatomeas chilenas. TII.

El género Chaetoceros Ehr. (Subgénero Phaeoceros GTaN) ........oocccocccoccccco 61

Contribution to the diatom flora of Chile. I11. The genus Chaetoceros Ehr.

(Subgenus Phaeoceros Gran).

PARRA, 0.0., GONZALEZ, H. and M. GONZALEZ. A comparision of epiphytic diatom

assemblages attached to filamentous algae in lotic freshwater habitats of Chile ................ 85

MUÑOZ, M., ROMO, H. y K. ALVEAL. Efecto de la salinidad en el crecimiento de tetrasporofitos

de Gracilaria verrucosa Hudson Papenfuss (Rhodophyta, Gigartinales) ....................... 119

Effect of salinity on growth of tetrasporelings of Gracilaria verrucosa

(Rhodophyta, Gigartinales).

ROMO, H., ALVEAL, K. y M. AVILA. El efecto de la poda en sobrevivencia, tamaño y

rendimiento de Macrocystis pyrifera (L.) Ag. (Lessoniaceae) de Isla Navarino (Chile) ........ 127

Harvest effect on survival, size and yield of Macrocystis pyrifera (Lessoniaceae)

of Navarino Island, Chile.

COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS (Book Reviews) ............ooooooooooo as 136

Deseamos establecer canje con Revistas similares

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UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

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DIRECTOR DE LA REVISTA:

Patricio Rivera R.

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR:

Oscar Matthei J.

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Guillermo Clericus E.

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Universidad de Concepción

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Universidad de Valparaíso

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FEDERICO SCHLEGEL

Universidad Austral de Chile

JOSE STUARDO

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TOD STUESSY

Ohio State University, U.S.A.

GUILLERMO TELL

Universidad de Buenos Aires, Argentina

HAROLDO TORO

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Ñ e yr NN rs

ISSN 0016-5301

GAYANA

BOTANICA VOLUMEN 41 NUMEROS 3-4 1984

CONTENIDO

PEREIRA, LA. y 0.0. PARRA. Algas filamentosas dulceacuícolas de Chile. I. Algas

Ea UE CONCEPCIÓN SE A A ON

THEODULOZ, C. y 0.0. PARRA. Desmidiaceas (Saccodermae y Placodermae) de Chile.

IV. Desmidiaceas del sistema de lagos de la Cordillera del Paine y alrededores .......

PSSPENIAARIOSDBIBLIOGRAFICOS. 000 05 0000 00 0 a A AA AS DION

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

Pág.

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY. Hist. de Chile, I: 14(1848).

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORIAL UNIVERSITARIA

EL 20 DE DICIEMBRE DE 1984

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

Gavyana, Bot. 41(3-4): 141-200, 19084

PEREIRA Y PARRA

ISSN 0016-5301

ALGAS FILAMENTOSAS DULCEACUICOLAS DE CHILE

Il. ALGAS BENTONICAS DE CONCEPCION*

FRESHWATER FILAMENTOUS ALGAE OF CHILE

I. FRESHWATER BENTHIC ALGAE OF CONCEPCION

Iris A. Péreira** y Oscar O Parras

RESUMEN

Se realizó un estudio taxonómico y ecológico de las algas

filamentosas que crecen en la zona litoral de 11 cuerpos

lénticos dulceacuícolas de la región de Concepción, Chile.

Se analizó 185 muestras que fueron recolectadas du-

rante el período comprendido entre marzo de 1980 y

marzo de 1981. Se determinó un total de 61 taxa: 6 Xan-

thophyceae y 55 Chlorophyceae, de los cuales 36 corres-

ponden a nuevas citas para Chile.

También, se presenta observaciones sobre dominan-

cia, abundancia y fenología.

ABSTRACT

A taxonomical and ecological study on filamentous algae

from the litoral zone of 11 lentic freshwater bodies of the

Concepción area, Chile, was carried out.

A total of 185 samples collected from march 1980

throughout march 1981 were examined; 61 taxa, 6 Xan-

thophyceae and 55 Chlorophyceae were determined,

from which 36 taxa were new records to Chile.

Ecological observations about dominance, abundance

and phenology are also presented.

KEY WORDS: taxonomy, ecology, lentic freshwaters, fila-

mentous algae, Xanthophyceae, Chlorophyceae, pheno-

logy, Chile.

INTRODUCCION

Con este trabajo iniciamos el estudio taxonó-

mico y ecológico de las algas bentónicas con

talo filamentoso de Chile, que en la zona lito-

ral en los cuerpos de aguas continentales lle-

gan a constituir diversas comunidades micros-

cópicas y macroscópicas.

Con el objeto de precisar la información

ecológica de cada taxa creemos necesario ha-

cer una relación crítica sobre la terminología

utilizada para nombrar estas unidades ecoló-

gicas y adoptar un determinado criterio en el

uso de estos términos en el presente trabajo y

en los próximos sobre el tema en cuestión.

Wetzel (1975) señala que la “filología aso-

ciada con bacterias y algas que están adheridas

* Proyecto N” 2.08.95, financiado por la Dirección de

Investigación de la Universidad de Concepción, Chile.

** Departamento de Biología y Química, Universidad de

Talca, Chile.

***Departamento de Botánica, Universidad de Concep-

ción, Chile.

141

de diferentes formas a un sustrato es muy

enredada y que el número de términos es

grande y que muchos de ellos son innecesaria-

mente complejos y bastante confusos, espe-

cialmente cuando se extraen de su definición

original”.

En los cuerpos acuáticos continentales, los

organismos algales se organizan en asociacio-

nes o comunidades que se caracterizan por

determinadas adaptaciones morfofuncionales

a un tipo particular de hábitat o microhábitat.

En general, pueden agruparse en primera ins-

tancia en dos grandes comunidades o “com-

plejo” de comunidades; el fitoplancton, comu-

nidad de organismos libre-flotantes, errante y

el fitobentos, término colectivo, que “incluye a

todas las asociaciones de algas que no están

flotando libremente en las aguas” (Round,

1965, p. 456), es decir, o están fijos a un sustra-

to natural o artificial o bien se movilizan sobre

cl

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Según definición de Font-Quer (1953)

“bentos corresponde al conjunto de los organis-

mos acuáticos adaptados a vivir sobre un sus-

trato sólido”, siendo el “fitobentos, el bentos

vegetal o parte del bentos formada por vegeta-

les”. Round (1965) indica que el phytobento

está compuesto por tres importantes “asocia-

ciones” de algas: 1) el epafiton que crece princi-

palmente sobre plantas macroscópicas; 2) el

epiliton que crece sobre superficies de rocas y

sustrato inorgánico, y 3) el epapelon que está

compuesto por especies móviles que se en-

cuentran en los sedimentos. El mismo autor

describe una asociación algal microscópica

que crece sobre los granos de arena de los

sedimentos y que denomina epipsammon que

sería parte integrante del epipelon pero muy

particular.

Font-Quer (loc. cit.) entrega las siguientes

definiciones para los términos mencionados

arriba: 1) epifiton “aplícase a los vegetales que

viven sobre otras plantas sin sacar de ellas su

nutrimiento”, y 2) epifiton, se dice de los vege-

tales que se desarrollan directamente sobre la

superficie de las rocas”. El término epipelon

no es definido en Font-Quer.

Wetzel (1975) diferencia en el fitobentos las

siguientes comunidades de algas: 1) algas epr-

pélicas como la flora que crece sobre los sedi-

mentos (finos, orgánicos); 2) algas epilíticas,

que son las que crecen sobre superficies de

rocas O piedras; 3) algas epifíticas, son las que

crecen sobre superficies de las macrófitas; 4)

algas epizoicas que crecen sobre la superficie de

los animales, y 5) algas epipsámmicas que corres-

ponden a un grupo bastante específico de or-

ganismos que están creciendo o se están mo-

viendo entre los granos de arena.

Los términos nombrados y discutidos hasta

aquí están claramente definidos y su aplica-

ción no implica problemas. Pero el término

que sí produce confusión es el de perifiton. El

término perifiton ha sido variadamente usa-

do, interpretado literalmente significa “alre-

dedor de una planta”, comprendiendo orga-

nismos sésiles sobre y alrededor de todo tipo

de sustrato. Roll (1939) usó el término peri-

phyton para todos los organismos adheridos

sobre algún sustrato; él lo dividió en 1) epiph)-

ton, incluyendo a todos los organismos que

están sobre un sustrato estable no consideran-

do su pertenencia a comunidades y 2) lasion,

PEREIRA y PARRA

142

que es el conjunto de organismos adheridos

que forman comunidades reales. Aufwuchs

(en Alemán = creciendo sobre) tiene un uso

muy cercano a perifiton. Ruttner (1963) in-

cluyó en este término a todos los organismos

que están suave o firmemente adheridos a un

sustrato pero no penetrando en él. Roll (1939)

considera al Aufwuchs' como una etapa tem-

prana en el desarrollo de un lasion. El término

Alemán Bewuchs” correspondería para algu-

nos autores (Johansson 1982) a lasion, pero

otros lo extienden al perifiton en sentido am-

plio. Según Young (1945) significa “el conjun-

to de organismos que crece, sobre superficies

libres de objetos sumergidos en el agua y cu-

briéndolo con una tenue cubierta”. Ringuelet

(1962) indica “conjunto de organismos adhe-

rentes o sueltos, microscópicos o diminutos,

estrictamente localizados sobre superficies li-

bres de vegetales sumergidos o sobre objetos

inanimados, formando una cubierta o nata

continua y discontinua”.

El término perifiton? es definido en Font-

Quer (1953) de la siguiente forma. “Tipo de

comunidad biótica constituida por organis-

mos microscópicos que viven adheridos sobre

un sustrato sólido y continuamente sumer-

gido”.

Round (1964) indica que periphyton (Auf-

wuchs y/o Bewuchs) corresponde a un término

colectivo y obscurece el hecho que floras sepa-

radas y bien definidas son encontradas sobre

sustratos bajo la superficie del agua. Round

agrega que es preferible el uso de los términos

epipélico, epilítico y epifítico, ya que describen

claramente el sustrato sobre el cual crecen las

algas en los hábitats naturales, en cambio el

perifiton usado en sentido amplio incluye or-

ganismos creciendo tanto en sustratos natura-

les y artificiales.

Wetzel (1975) lo define como la microflora

que crece sobre un sustrato; según Whitton

(1975) corresponde a todos los tipos de algas

'El término “Aufwuchs” fue introducido por Willer

(1920) para cubrir la totalidad de la comunidad bentónica

sésil.

“El término “Bewuchs” lo introdujo Hentschel (1915)

(ver Hickman 1971 p. 51) y cubre los organismos adheri-

dos a placas de vidrios.

3El término “periphyton” fue originalmente usado pa-

ra incluir aquellos organismos adheridos a objetos artiti-

cialmente sumergidos (Behning, 1928).

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

que crecen sobre superficies, sea epilíticas o

epifíticas y ya sea adheridas firme o débilmen-

te; Sládetková (1962) usó periphyton para rete-

rirse a las algas que han colonizado portaobje-

tos; sin embargo, tales sustratos atraen tanto

formas epifíticas y epilíticas, constituyendo

también una trampa para una colonización

secundaria para algas epipélicas y planctóni-

cas . Wetzel (1964) como ya lo indicamos utili-

za el mismo término para describir comunida-

des epilíticas y epipélicas mezcladas. De ahí

que Round (1964), Round y Hickman (1971)

aconsejan que estos términos “colectivos” de-

ben ser mejor desechados por su inadecuada

definición de las comunidades bentónicas.

La American Public Health Association

(A.P.H.A.) (1976) dice: “el complejo hetero-

géneo de organismos que colonizan sustratos

sumergidos naturales y artificiales son colecti-

vamente denominados periphyton (Autwuchs).

Foerster y Schlichting (1965) denominan al

componente algal del pennphyton como phycope-

niphyton.

Al revisar la literatura moderna sobre el

tema, nos encontramos que existen autores

que utilizan el término perifiton en sensu lato

(cf. Gough y Woelkerling 1976. Roeder 1977;

Obeng-Asamoa et al. 1980, John et al. 1980,

Economou-Amilli, 1980; Economou-Amilli y

Anagnostidis 1981; Hamala et al. 1981; Emin-

son y Moss 1980; Moss, 1981), otros en cambio

prefieren no utilizarlo y se refieren explícita-

mente a los términos asociados al sustrato e.g.

epilithon, epiphyton, etc. (cf. Moore 1974,

1977; Cattaneo y Kalff 1978, 1981; Kairesalo

1980). Para complicar aún más el asunto, otros

autores mezclan los términos y hablan de peri-

fiton-epilítico (cf. Gough 1981).

Una tendencia que podríamos considerar

como no comprometida es aquella de los auto-

res que se refieren a “comunidades o conjun-

tos de algas adheridas” (“attached algal com-

munities or attached algal assemblages”) (cf.

Tuchmann y Blinn 1979, Johansson el al.

1977, Johansson 1982).

Por otra parte, existe una comunidad algo-

lógica que se encuentra agregada en la zona

litoral, la cual no está estrictamente adherida a

un substrato ni es verdaderamente planctóni-

ca. Esta es denominada metaphyton (Behre

1956). Round (1964) considera al metaphyton

como un probable sinónimo de pseudoperiphy-

PEREIRA Y PARRA

143

ton de Sládecková (1962), e indica que este

término puede ser usado más ampliamente

para señalar a todas las algas que no están

claramente asociadas a un sustrato ni son li-

bre-flotante. Wetzel (1975) agrega que este

término también es sinónimo de tychoplankton

y pseudoplankton usado primeramente por

Naumann (1932), e indica además que esta

comunidad se origina por una parte de pobla-

ciones planctónicas verdaderas que se agre-

gan entre las macrófitas y quedan como resto

en la zona litoral, debido a los movimientos de

aguas causados por el viento, también se origi-

nan por fragmentación de poblaciones algales

densas de las comunidades epipélicas y epifí-

ticas.

Por último, es importante destacar el crite-

rio de Hutchinson (1975) respecto a las comu-

nidades de algas bentónicas. En el volumen

IM (1975) capítulo 32 “The Algal Benthos”

(pp. 509-511), no hace ninguna mención a los

términos: “Aufwuchs”, “Bewuchs”, periphy-

ton y metaphyton, simplemente no los consi-

dera. Hay que señalar que el mismo Hutchin-

son en el volumen Il (1967) de su monumen-

tal obra, específicamente en el capítulo 19

“The structure and terminology of lacustrine

biological community” menciona y discute los

términos periphyton, “Aufwuchs” y “Be-

wuchs”, pero no menciona el metaphyton.

Hutchinson no explica por qué en el último

volumen omite estos términos, dando la im-

presión que adopta el criterio de Round y hace

la siguiente descripción: “en general, estas co-

munidades pueden ser clasificadas como hap-

tobénticas, que viven sobre un sustrato sólido

y herpobénticas que viven en o sobre el sedi-

mento”. La mayoría de las comunidades hap-

to-bénticas son epilíticas sobre piedras, rocas y

otras sobre sustrato sólido muerto, o epifíticas

sobre plantas, o epizoicas sobre animales. El

herpobentos es descrito como epipélico. Tam-

bién menciona una categoría el “endobentos”,

el cual incluye organismos endolíticos perfo-

rantes y organismos parásitos, comensales o

saprófitos endofíticos.

Otro importante tema que debe analizarse

es la utilización de los términos “comunidad”,

“subcomunidades” y “asociación”, en los eco-

sistemas acuáticos. Al revisar la literatura estos

términos son usados con un sentido muy va-

riado. En el presente trabajo adoptaremos el

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

criterio establecido por Round (1964): “el tér-

mino comunidad es usado para el conjunto de

organismos que viven en un hábitat definido;

los organismos tienden a exhibir una forma de

vida característica y se presentan en variadas

proporciones por todo el rango del hábitat. En

seguida acota que “no es fácil y probablemente

no deseable el uso de nombres genéricos en

una descripción de la comunidad ya que tiene

a ser una abstracción solamente definible a

partir de una base hábitat; así en el ambiente

acuático existen 2 comunidades principales, la

planctónica y la bentónica, 1.e., la comunidad

de aguas abiertas y la de fondo y sus plantas

asociadas. Ambas comunidades necesitan ser

subdivididas en unidades menores, antes de

emprender un estudio florístico y por desear

una mejor terminología, estas unidades po-

drían ser denominadas subcomunidades; estas

subcomunidades serían conjuntos de organis-

mos asociados con una particular fase física

del hábitat ocupado por la comunidad, e.g. la

película superficial del agua, la superficie de

las piedras del bentos, etc.”.

Un tercer nivel de organización correspon-

de según Round a la “asociación” que para

definirla se considera el grado de dominancia,

constancia O fidelidad de las especies, siendo

posible y deseable además la distinción de gru-

pos de especies diferentes (dentro de la subco-

munidad). Según Round en el estado presente

de la sociología algal, la asociación es la unidad

más apropiada, junto con la de subasociación,

la cual podría tener alguna realidad en térmi-

nos de microhábitats. En resumen Round pro-

pone la siguiente jerarquía:

1) Comunidad: (plancton, bentos).

2) Subcomunidad: (neuston, euplancton, epl-

pelon, epifiton, epiliton).

Asociación: (tipificada por grupos de géne-

ros y especies).

Subasociación: (tipificada por grupos de

géneros y especies).

3)

4)

En Hutchinson (1967) el término comuni-

dad es asimilado al de biocenosis, la cual se

define como la comunidad biológica toda de

un área definida en la cual individuos de va-

rias especies viven lado a lado y persisten en

virtud de sus actividades reproductivas. El tér-

mino biocenosis ha sido usado con diferentes

sentidos por diferentes autores. La mayoría

de ellos miran a la biocenosis como la comunli-

PEREIRA Y PARRA

144

dad que ocupa un biotopo, pero esto al pare-

cer no es tan universal.

Para Hutchinson (loc. cit.) la única división de

la biocenosis que parece tener un significa-

do en ecología limnológica son las asociacio-

nes, definidas según los ecólogos vegetales eu-

ropeos. El define la asociación como la parte

de biocenosis que puede ser caracterizada por

especie dominante o al menos característica.

Dentro de un biotipo se puede reconocer

una serie de hábitats los cuales pueden caracte-

rizarse en término de las especies presentes y

se considera aquí como teniendo una exten-

sión espacial.

Para Hutchinson (loc. cit), un lago es consi-

derado simplemente como un ecosistema úni-

co, con un simple biotopo y soportando una

única biocenosis, y agrega que este ecosistema

provee de muchos hábitats y nichos y que la

biocenosis es divisible en varias asociaciones

tanto de plantas como de animales.

El presente trabajo se refiere a la taxonomía

y ecología de las algas filamentosas de las co-

munidades bentónicas de cuerpos de aguas de

la región de Concepción (Chile), utilizaremos

los términos perifiton cuando nos refiramos a

organismos algales que se encuentran adheri-

dos a cualquier tipo de sustrato sumergido sea

natural o artifical y metafiton para aquellas po-

blaciones que se encuentran agregadas en la

zona litoral, es decir, que no están adheridas a

un sustrato y que no son tampoco planctóni-

cas. En los casos que se halla identificado el

sustrato, 1.e. rocoso, sedimento, macrófita, etc.

se utilizarán los términos correspondientes,

1.e. epiliton, epipelon y epifiton respectiva-

mente.

Las algas filamentosas presentes en la zona

litoral de los cuerpos de agua dulce (perifiton

y/o metafiton) han sido muy poco estudiadas

en nuestro país, pues la mayoría de las contri-

buciones algológicas se han referido al fito-

plancton.

La taxonomía de la mayor parte de estos

grupos de algas está basada principalmente en

caracteres de tipo reproductivo, por lo que se

hace indispensable un muestreo periódico con

una duración anual. Esto, además de permitir

una determinación correcta de los taxa, nos

proporciona elementos para conocer la feno-

logía del grupo.

Ahora bien, considerando la gran cantidad

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

de cuerpos de agua dulce de la provincia de

Concepción y el buen conocimiento que se

tiene actualmente de su flora fitoplanctónica,

es que se consideró de interés iniciar el estudio

de sus comunidades de algas bentónicas. Esto

permitirá avanzar en el conocimiento ecológi-

co de estos recursos naturales.

PEREIRA Y PARRA

Una razón que justifica el conocimiento de

esta comunidad de algas es la importancia ad-

quirida en los ambientes acuáticos alterados

por el hombre, en donde sus valores de pro-

ductividad primaria pueden ser incluso supe-

riores a los del fitoplancton (Moss 1969, 1980

y Kairesalo 1980).

AREA DE ESTUDIO

El área de estudio se encuentra comprendida

entre los paralelos 36%48'S y 37%01%S y los

meridianos 72%25'W y 73%10'W.

Se muestreó un total de 11 cuerpos de agua

dulce, ubicados en la provincia de Concepción

(Fig. D.

La gran mayoría de ellos corresponden al

sistema de lagos al norte y sur del río Bío-Bío y

el resto lo constituyen cuerpos de agua meno-

res: Ellos son:

1. Laguna Quiñenco

(I7201'S, 7305")

. Laguna La Posada

(36%56'S, 7310'"W)

. Laguna Chica de San Pedro

MBaZIS, 73707 'W)

. Laguna Grande de San Pedro

(36752'S, 7309"W)

. Estero Los Batros

(56-925, 73"L0"W)

. Laguna Redonda

(36752"5,1309"'W)

. Laguna Lo Méndez

(36"90"5S, 73502 "W)

. Laguna Lo Galindo

(36%48"S, 73%02'"W)

. Laguna Pineda

(36*49'5, 72223"W)

Lagunas Sector Price

(3673578, -73"10''W)

Laguna en el Sector Cosmito

(3647'S, 73%02'"W)

Información de carácter limnológico sobre

algunos de los cuerpos de agua anteriormente

mencionados se encuentra en los trabajos de

Dellarossa et al. (1976), Dellarossa et al.*, Parra

et al. 1980.

10.

yl.

MATERIALES Y METODOS

Se analizó un total de 185 muestras. El mues-

treo se efectuó con una periodicidad mensual

por espacio de un año, entre marzo de 1980 a

marzo de 1981.

Las muestras fueron obtenidas siguiendo el

método de raspado descrito por Bourrelly

(1966) para algas bentónicas que consiste en

desprender, mediante algún objeto cortante o

pinzas, las algas filamentosas con el fin de

conservar intacta la base para su mejor deter-

minación. Este método se utilizó principal-

mente para aquellas algas que formaban parte

del perifiton. Aquellas del metafiton, se reco-

lectaron en forma directa y manual. Parte del

material fue herborizado inmediatamente.

Además, se anotó la hora de la toma de las

muestras y se realizaron observaciones tales

como: estado del tiempo, tipo de sustratos dis-

145

ponibles, abundancia relativa y flora acompa-

nante.

El material fue observado in vivo en el labo-

ratorio, en ciertos casos se llevó material fresco

a cámaras de cultivo y el resto fue fijado con

formalina neutra al 4%.

Para la determinación taxonómica se dispu-

so de un microscopio Carl Zeiss WL, equipado

con cámara clara y equipo fotomicrográfico.

El material se observó en fase acuosa sin trata-

miento previo.

Las muestras fueron depositadas en la Fico-

“Dellarossa, V., O. Parra, E. Ugarte y L. Balabanoff

(1980). Estudios Limnológicos en el Sistema de Lagunas al

Sur del río Bío-Bío. 11. Composición iónica del Sistema

Informe mimeografiado, Dirección de Investigación,

Universidad de Concepción, Chile.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

73915' 73900

BAHIA DE

CONCEPCION

TALCAHUANO

PACIFICO

37%45

OCEANO

LAGUNA

GRANDE

GOLFO SN. PEDRO

DE

LAGUNA LA

POSADA

ARAUCO

Ty! ACUNA QUIÑENCO

37900

ESCALA 1: 200.000

Fig. 1. Area de estudio.

146

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

teca del Laboratorio de Ficología del Departa-

mento de Botánica, Facultad de Ciencias Bio-

lógicas y de Recursos Naturales, Universidad

de Concepción, Chile.

En la siguiente lista se presenta en detalle

las muestras con su número de entrada a la

colección (Ficoteca CONC) por cuerpo de

agua estudiado.

1. Laguna Quiñenco: 1291, 1292, 1293,

12941295, 1296, 1297, 1298, 1299, 1854,

1855, 1856, 1857, 1975, 1977, 1978, 1979.

2. Laguna La Posada: 1354, 1355, 1356,

1357, 1358, 1466, 1467, 1468, 1469, 1510,

IA 1512,1513, 1514, 1515, 1516, 1517,

INSS 11599, 1590, 1591, 1592, 1593, 1733,

MA L735, 1736, 1737,1738, 1778, 1779,

1780, 1781, 1782, 1831, 1832, 1833, 1834,

1835; 1836, 1980, 1981.

3. Laguna Chica de San Pedro: 1258, 1259,

1260, 1261, 1262, 1263, 1264, 1265, 1266,

12071268, 1269; 1270, 1271, 1272; 1370,

1371,1372, 1373, 1374, 1481, 1482, 1483,

J484 1485, 1486, 1537, 1538, 1539, 1540,

1542, 1748, 1749, 1750, 1751, 1752,

1753, 1754, 1755, 1756, 1796, 1797, 1798,

1799, 1850, 1851, 1852, 1853, 1854, 1855,

1856, 1953.

4. Laguna Grande de San Pedro: 1273,

PAZ 15 11276, 1211, 1278,1279, 1280,

1281, 1282, 1283, 1284, 1285, 1286, 1287,

1288, 1289, 1290, 1363, 1364, 1365, 1366,

1367, 1368, 1369, 1475, 1476, 1477, 1478,

IASMA80, 1524, 1525,1526, 15271528,

(5291930,,1531, 1532, 1533,.1534,.1535,

1536, 1743, 1744, 1745, 1746, 1747, 1789,

7901791, 1792, 1793, 1794, 1795:1842,

1843, 1844, 1845, 1846, 1847, 1848, 1849,

19211, 1922, 1923, 1940, 1941, 1942, 1984,

1985, 1986.

estero lios Batros: 1359, -1360,, 1361;

INTA

1362, 1470, 1471, 1472, 1473, 1474,1518,

1519, 1520, 1521, 1522, 1523. 1739, 1740:

1741, 1742, 1784, 1785, 1786, 1787, 1788,

1837, 1838, 1839, 1840, 1841

. Laguna Redonda: 1326, 1327, 1328,

1329, 1330, 1331, 1332, 1334, 1345, 1346,

1347, 1348, 1349, 1350, 1351, 1352, 1353,

1400, 1401, 1402, 1403, 1404, 1462, 1463,

1464, 1465, 1573, 1574, 1616, 1617, 1618,

1619, 1620, 1621, 1622, 1623, 1624, 1625,

1626, 1627, 1628, 1629, 1883, 1884, 1943,

1944, 1945, 1968, 1969, 1970, 1971, 1972,

1974, 1975, 1976.

. Laguna Lo Méndez: 1317, 1318, 1320,

1321, 1405, 1406, 1407, 1408, 1409, 1410,

1507, 1508, 1509, 1580, 1581, 1582, 1583,

1829, 1858, 1859, 1860, 1861, 1889, 1890,

1919, 1920, 1928, 1938, 1939.

. Laguna Lo Galindo: 1336, 1460, 1461,

1504, 1505, 1506, 1575, 1576, 1579, 1885,

1886, 1887, 1888, 1924, 1925, 1926, 1927,

1946, 1947, 1948, 1949, 1950, 1957, 1958,

1959, 1960, 1966, 1967, 1973, 1994, 1995,

I996 AMOO TE

. Laguna Pineda: 1300, 1301, 1302, 1303,

1304, 1305, 1306.

. Lagunas Sector Price: 1332, 1333, 1334,

1335, 1337, 1338, 1375, 1487, 1488, 1543,

1544, 1545, 1546, 1752, 1753, 1757, 1801,

1802, 1803.

Laguna Sector Cosmito: 1311, 1312,

1313, 1314, 1315, 1316, 1395, 1396, 1397,

1398, 1399, 1489, 1490, 1491, 1492, 1493,

1547, 1548, 1549, 1550, 1551, 1552, 1553,

1554, 1594, 1595, 1596, 1597, 1598, 1599,

1758, 1759, 1761, 1804, 1805, 1806, 1807,

1809, 1810, 1863, 1869.

El trozo adjunto a las figuras corresponde,

salvo indicación contraria, a 10 ¡nm.

RESULTADOS

PARTE ECOLOGICA

En la Tabla 1 se entrega la distribución de los

taxa en los distintos cuerpos de aguas y en la

147

Tabla II se da el número de taxa por cuerpos

de agua estudiados.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

TABLA 1. LISTA DE TAXA DETERMINADOS

Y SU UBICACION EN LOS CUERPOS DE AGUA ESTUDIADOS

A RP Au > o FÉ

TAXA CUERPOS DE AGUA ESTUDIADOS

2 SA O EIA LON DL

CLASE XANTHOPHYCEAE

Tnbonema affie +

Tnbonema ambiguum -

Tribonema minus +

Tnbonema regulare -

Vauchena geminata +

Vaucheria pachyderma +

CLASE CHLOROPHYCEAE

Ulothnx ronda. +

Ulothnx tenuissima +

Ulothrix variabilis +

Ulothrix zonata -

Uronema confervicolum SE +

Cylindrocapsa geminella - +

Stigeoclontum tenue 5 +

Draparnaldia glomerata + +

Cladophora glomerata + + + + +

Rhizoclontum hieroglyphicum + + +

Oedogonium alternans +

Oedogonium cardiacum

Oedogonium curvum Er +

Oedogonium cyathigerum var. ellipticum + + +

Oedogonium gunna + -

Oedogonium hystricinum var. excentriporum +

Oedogonium aff. implexum +

Oedogonium aff. 10wense +

Oedogontum mitratum

Oedogonium petr. +

Oedogontum pisanum -

Oedogonium aff. reinscha.

Oedogonium spirostriatum.

Oedogonium suecicum. -

Oedogonium undulatum. +

Oedogonium vauchera. + +

Bulbochaete debaryana. +

Bulbochaete depressa. +

Bulbochaete intermedia var. depressa. +

Bulbochaete aff. praereticulata. +

Bulbochaete rectangularis. +

Bulbochaete varians. E

Zygnema pawneanum. sE ro aa

Zygnemopsis decussata. +

Mougeotia laetevirens. -

Mougeotía paludosa.

Mougeotia parvula.

Mougeotia viridas.

Spirogyra catenaeformas. + + +

Spirogyra decimina. - +

Spirogyra distenta. + +

Spirogyra gracilis. +

Spirogyra indica. + -

Spirogyra inflata. +

Spirogyra oblata. -

Spirogyra oliwascens. -

Spirogyra parvula. + +

Spirogyra pratensis. +

Spirogyra reimhardi. -

Spirogyra subvelata. >

Spirogyra tenuissima. +

Spirogyra teodoresci. +

Spirogyra varians. q +

Spirogyra weber. +

Sirogonsum stichicum. -

A AAA _ _ _ __ _ _—__ _—_ _——__ A A

+

+ +++

1. Laguna Quiñenco. 2. Laguna La Posada. 3. Laguna Chica de San Pedro. 4. Laguna Grande de San

Pedro. 5. Estero Los Batros. 6. Laguna Redonda. 7. Laguna Lo Méndez. 8. Laguna Lo Galindo. 9.

Laguna Pineda. 10. Lagunas Sector Price. 11. Laguna Sector Cosmito.

148

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

A continuación se entregan datos sobre

abundancia, especies dominantes y fenología

de los taxa determinados para cada laguna.

l. LaGunAa QUIÑENCO

Flora de algas filamentosas: escasa.

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

Ulothrix variabilis esa En

Cylindrocapsa geminella ES Ez

Draparnaldia glomerata a —

Oedogonium curvum sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Oedogonuum suecicum sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Oedogontum undulatum nov. 80 Primavera

Spirogyra pratens1s sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Spirogyra sp. estéril. == —

Especies dominantes: Oedogontum curvum, Oe-

dogonium suecicum, Cylindrocapsa gemanella. No

se observó desarrollo masivo de estas algas en

ninguna época del año.

2. Lacuna La PosADpa

Flora de algas filamentosas: escasa.

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Oedogonium gunnt oct. 80 Primavera

Oedogonium spirostratum ene. 80 Verano

Oedogonium aff. reimschi == —

Oedogontum suecicum oct. 80 Primavera

Oedogonium undulatum oct. 80 Primavera

Bulbochaete aff. praereticulata En =

Bulbochaete rectangularis oct. 80

11 nov. 80 Primavera

Spirogyra tenuissima oct. 80 Primavera

Spirogyra sp. estéril E E

Zygnema sp. estéril — =

Mougeotia sp. estéril —

Especies dominantes: no se presentaron. No

se observó desarrollo masivo de estas algas en

ninguna época del año.

3. LAGUNA CHICA DE San PeDRO

Flora de algas filamentosas: escasa.

PEREIRA Y PARRA

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Ulothrix ronda == an

Uronema conferuicolum > se

Cladophora glomerata — —

Oedogonium petri sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Oedogontum undulatum oct. 80 Primavera

Bulbochaete intermedia

var. depressa. oct. 80 Primavera

Zygnema pawneanum dic. 80 Primavera

Zygnemopsis decussata dic. 80

ene. 81 Prim.-Ver.

Mougeota laetevirens

Spirogyra gracilas feb. 80 Verano

Spirogyra sp. estéril =— a

Mougeotia sp. estéril — —

Especies dominantes: Bulbochaete intermedia

var. depressa y Cladophora glomerata. No se ob-

servó desarrollo masivo de estas algas en nin-

guna época del año.

4. LAGUNA GRANDE DE San PEDRO

Flora de algas filamentosas: abundante.

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Tnbonema regulare — =

Ulothrix zonata = —

Uronema confervicolum — —

Stgeoclonuum tenue — —

Oedogonium alternans oct. 80 Primavera

Oedogonium cardiacum oct. 80 Primavera

Oedogonium curvum oct. 80 Primavera

Oedogonum gunnu oct. 80 Primavera

Oedogonium aff. implexum oct. 80 Primavera

Spirogyra decomina nov. 80 Primavera

Spirogyra indica nov. 80 Primavera

Spirogyra reimhardu sep.-oct. 80 Primavera

Spirogyra sp. estéril = =

Especies dominantes: Oedogontum cardiacum,

Spirogyra decimina, Spirogyra indica, Sfarogyra

reinhardii. Se observó un desarrollo masivo de

estas algas especialmente durante los meses de

primavera.

5. EsrerRO Los BATROS

Flora de algas filamentosas: abundante.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Tribonema ambiguum — —

Vaucheria geminata oct. 80 Primavera

Mougeota laetevirens feb. 80 Verano

Mougeota paludosa feb. 80 Verano

Mougeotia parvula feb. 80 Verano

Mougeotia viridis feb. 80 Verano

Spirogyra inflata feb. 80 Verano

Spirogyra sp. estéril

Especies dominantes: Vaucheria gemimnata. No

se observó desarrollo masivo de otras algas, se

mantuvo en forma predominante durante los

meses de primavera.

6. LAGUNA REDONDA

Flora de algas filamentosas: muy abundantes.

Taxa Determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Uronema confervicolum — —

Cladophora glomerata = =

Rhazoclomum heroglyphicum — —

Oedogontum cardiacum sept. 80 Primavera

Oedogonium vaucherú sept. 80 Primavera

Oedogonium undulatum nov. 80 Primavera

Bulbochaete debaryana dic. 79 Primavera

Spirogyra decomina oct. 80-

nov. 80 Primavera

Spirogyra indica sept. 80 Primavera

Spirogyra catenaeformas sept. 80 Primavera

Spirogyra parvula = =—

Spirogyra weberi ago. 80-

sep. 80 Inv.-Prim.

Especies dominantes: Spirogyra decimina y Spa-

rogyra indica. Se observó desarrollo masivo de

estas algas durante los meses de primavera.

7. LAGUNA Lo MÉNDEZ

Flora de algas filamentosas: abundante

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Cladophora glomerata — —

Oedogonium cardiacum sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Oedogonium cyathigerum sept. 80 Fines

var. elliapticum. Inv.-Prim.

Oedogonium vaucheri sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Spirogyra catenaeformis sept. 80 Primavera

Sptirogyra distenta oct. 80 Primavera

Sptrogyra sp. estéril qñn q

150

Especies dominantes: Cladophora glomerata,

Oedogontum cardiacum, Oedogontum vauchern,

Spirogyra distenta. Se observó desarrollo masi-

vo de estas algas durante los meses de prima-

vera y comienzo de verano.

8. LAGUNA Lo GALINDO

Flora de algas filamentosas: abundante.

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Tribonema affine — =

Tribonema minus = SS

Ulothrix tenuissima as =

Stigeoclonium tenue = =

Draparnaldia glomerata = ==

Oedogonium cardiacum oct. 80 Primavera

Oedogomum cyathigerum

var. ellipticum oct. 80 Primavera

Spirogyra distenta mar. 81 Verano

Spirogyra olivascens oct. 80 Primavera

Spirogyra parvula oct. 79 Primavera

Spirogyra varians oct. 79 Primavera

Spirogyra sp. estéril

Especies dominantes: Spirogyra distenta, Spiro-

gyra varians, Stigeoclontum tenue. Se observó de-

sarrollo masivo de estas algas durante los me-

ses de primavera.

9. LAGUNA PINEDA

Flora de algas filamentosas: escasa.

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Spirogyra teodoresci sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Spirogyra sp. estéril = —

Zygnema pawneanum sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Zygnema sp. estéril

Especies dominantes: no se observaron.

10. LaGunas SECTOR PRICE

Flora de algas filamentosas: escasa a abun-

dante.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Vaucheria pachyderma sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Cladophora glomerata — —

Rhizoclonium hieroglyphicum — =

Oedogonium cyathigerum sept. 80 Fines

var. ellipticum Inv.-Prim.

Oedogontum pisanum sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Spirogyra catenaeformas sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Spirogyra oblata sept. 80 Fines Inv.-

Prim.

Spirogyra subvelata sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Spirogyra varians sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Spirogyra sp. estéril — =

Zygnema pawneanum sept. 80 Fines

Inv.-Prim.

Zygnema sp. estéril —

Especies dominantes: Spirogyra oblata, Spirogy-

ra subvelata, Spirogyra varians. No se observó

desarrollo masivo de estas algas en ninguna

época del año.

11. LAGUNA EN EL SECTOR COSMITO

Flora de algas filamentosas: abundante a muy

abundante.

Taxa determinados Fecha de Estación

maduración

sexual

Cylindrocapsa geminella — -—

Cladophora glomerata = =

Rhizoclontum hieroglyphicum ES —-

Oedogonium hystricinum.

var. excentriporum oct. 80 Primavera

Oedogontum mitratum oct. 80 Primavera

Oedogonium aff. ¿0wense oct. 80 Primavera

Bulbochaete depressa oct. 80 Primavera

Bulbochaete varians oct. 80 Primavera

Sirogonium sticticum enero 80 Verano

Spirogyra sp. estéril

Zygnema sp. estéril

Especies dominantes: Rhizoclontum hieroglyphi-

cum y Cladophora glomerata. Se observó desa-

rrollo masivo de estas algas durante los meses

de primavera y comienzo de verano.

PARTE TAXONOMICA

Se determinaron 61 taxa; 6 Xanthophyceae y

151

55 Chlorophyceae. El número de taxa por

clase y géneros se presenta en la Tabla 11.

Tabla ll

NUMERO DE TAXA POR CUERPO DE AGUA

l Laguna Quiñenco 8

2. Laguna La Posada 11

3. Laguna Chica de San Pedro 12

4. Laguna Grande de San Pedro 13

5. Estero Los Batros 8

6. Laguna Redonda 12

7. Laguna Lo Méndez 7

8. Laguna Lo Galindo 12

9. Laguna Pineda 4

10. Lagunas Sector Price 12

11. Laguna Sector Cosmito 11

Tabla HI

NUMERO DE TAXA POR GENEROS

XANTHOPHYCEAE

Tribonema 4

Vaucheria 2

CHLOROPHYCEAE

Bulbochaete 6

Cladophora 1

Cylindrocapsa ]

Draparnaldia 1

Mougeotra 4

Oedogonium 16

Rhizoclontum 1

Sirogonum 1

Spirogyra 16

Stigeoclontum 1

Ulothrix 4

Uronema 1

Zygnema 1

Zygnemopsis 1

Los siguientes taxa se citan por primera vez

para Chile.

Tribonema affine (G.S. West) G.S. West.

Tribonema ambiguum Skuja

Tribonema minus (Klebs) Hazen

Tribonema regulare Pascher

Vaucheria pachyderma Walz

Ulothrix rorida Thuret

Cylindrocapsa geminella Wolle

Oedogonium alternans Wittrock et Lundell

Oedogonium cardiacum (Hassall) Wittrock .

Oedogonium curvum Pringsheim

Oedogonium cyathigerum Wittrock var. ellapticum

Magnus et Wille

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Oedogontum gunna Wittrock

Oedogontum hystricinum Transeau et Tiffany

var. exentriporum Jao

Oedogonium mitratum Hirn

Oedogomum petri Wittrock

Oedogontum pisanum Wittrock

Oedogontum suecicum Wittrock

Oedogontum vaucheri (Le Clerc) A. Braun

Bulbochaete depressa (Taft) Tiffany

Bulbochaete intermedia De Bary var. depressa

Wittrock

Bulbochaete varians Wittrock

Zygnema pawneanum Taft

Zygnemopsis decussata Transeau

Mougeotía laetevirens (A. Braun) Wittrock

Mougeotía paludosa G.S. West

Mougeotía parvula Hassall

Mougeotía viridis (Kúetzing) Wittrock

Spirogyra distenta Transeau

Spirogyra indica Krieger

Clase:

PEREIRA Y PARRA

Spirogyra oblata Jao

Spirogyra olivascens Rabenhorst

Spirogyra parvula (Transeau) Czurda

Spirogyra pratensis Transeau

Spirogyra remmharda Chmielewski

Spirogyra subvelata Krieger

Spirogyra weberi Kuetzing

El ordenamiento sistemático está hecho de

acuerdo a Bourrelly (1966, 1968). Los taxa

dentro de los géneros están ordenados alfabé-

ticamente. La determinación taxonómica se

basó fundamentalmente en los trabajos de los

siguientes autores: Bourrelly (1966, 1968),

Cox y Bold (1966), Czurda (1932), Ettl (1978),

Gemeinhardt (1939), Hazen (1902), Heering

(1902, 1921), Islam Nurul (1963), Krieger in

Kolwitz y Krieger (1941), Printz (1964), Ra-

manatham (1964), Rieth (1980), Tiffany

(1937), Transeau (1951) y Van den Hoek

(1963).

XANTHOPHYCEAE

Orden:

TRIBONEMATALES (= HETEROTRICHALES)

Familia:

TRIBONEMATACEAE

TRIBONEMA Derbes et Solier

Filamentos simples, uniseriados, con células

cilíndricas, a veces ligeramente infladas en

forma de tonel. Células con uno o varios

cromoplastos parietales, con o sin pirenoides.

Cada célula tiene una pared formada por dos

hemicilindros embutidos, además, cada hemi-

cilindro está adherido a la pared de otro hemi-

cilindro de la célula vecina, por lo tanto, la

pared puede desarticularse en fragmentos

iguales teniendo la forma de dos tubos cilín-

dricos huecos, abiertos en los extremos y lle-

vando tabique en el medio, cada uno de estos

trozos, en sección óptica, tiene la forma de una

E

Taxa citados anteriormente para Chile:

Tribonema aequale Pascher (Parra y Gonzá-

ler 11983):

152

Tnibonema elongatum Thomasson (Thomas-

son, 1963).

Tribonema affine (G.S. West) G.S. West

(Figs. 1 y 2)

Filamentos solitarios, reunidos en flóculos de

color amarillo-café, raramente aparecen en

manojos. Filamentos individuales, todos casi

del mismo tamaño. Tabiques transversales ca-

si prácticamente no contraídos. Células hasta

14 veces más largas que anchas, cilíndricas.

Pared celular muy suave hasta un poco engro-

sada, siempre firme. Cromoplastos general-

mente 2, raramente 1-3, anulares o en forma

de banda, o ligeramente espiralado, a veces

con contornos lobulados.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

DIMENSIONES: Células 4-6 veces más largas que

anchas, de 5 qm de ancho; de 16-22 um de

largo.

Hábitat: Laguna Lo Galindo. Presente en

zona litoral, formando parte del metafiton,

sumergida y semisumergida, escasa a abun-

dante. Crece asociada a especies del género

Spirogyra.

Tribonema ambiguum Skuja

(Fig. 3)

Filamentos en su mayoría solitarios, raramen-

te formando masas. Filamentos solitarios lar-

gos ligeramente doblados, poco o ligeramente

contraídos a nivel de los tabiques transversa-

les. Células alargadas o en forma de tonel.

Pared celular muy lisa y delgada. Cromoplas-

tos 2 a 4, parietales, discoides o hasta en forma

de banda, a veces ligeramente enrollado en

espiral, pardo-amarillento.

DIMENSIONES: Células hasta 10 veces más lar-

gas que anchas; 5-6 m de ancho; 37-42 um

de largo.

HÁnitTarT: Estero Los Batros. Presente en zona

litoral, formando parte del metafiton, sumer-

gida y semisumergida, escasa. Crece asociada

a especies del género Spirogyra y Mougeotia.

Tribonema minus (Klebs) Hazen

(Fig. 4)

Filamentos solitarios Oo reunidos en manojos

pequeños, rectos O levemente enredados, de

PEREIRA Y PARRA

color verde claro. Filamentos todos más o me-

nos iguales. Células con los tabiques transver-

sales levemente contraídos, a veces son ondu-

lados o curvos. Células cilíndricas o levemente

en forma de tonel. Pared celular delgada en

un comienzo, después se engruesa. Cromo-

plastos por lo general 2, anulares o semianula-

res. En proceso de división pueden aparecer 4

cromoplastos.

DIMENSIONES: Células una o 3 veces más largas

que anchas; 4-5 ¡pm de ancho; 5-13 ¡um de

largo.

HÁbitaT: Laguna Lo Galindo. Presente en

zona litoral, formando parte del metafiton,

sumergida, escasa. Crece asociada a especies

del género Spirogyra.

Tribonema regulare Pascher

(Figs. 5 y 6)

Filamentos rectos, pero a veces ondulados o

curvos. Células generalmente uniformes en

forma de tonel o cilíndricas, contraídas a nivel

de los tabiques transversales. Pared celular fir-

me. Cromoplastos bien desarrollados, por lo

general 4, dispuestos de a pares superpuestos.

DIMENSIONES: Células 2-3 veces más largas que

anchas, 6-7 ¡um de ancho; 17-25 ¡um de largo.

HÁBITAT: Laguna Grande de San Pedro. Pre-

sente en zona litoral, formando parte del me-

tafiton, sumergida, escasa. Crece asociada a

Oedogonúum alternans, O. cardiacum, O. gunni y

O. aff. implexum.

Orden:

VAUCHERIALES

Familia:

VAUCHERIACEAE

VAUCHERIA DC.

Filamentos cilíndricos, ramificados, a veces

muy regulares y no presentan tabiques (talo

sifonal). No hay diferencia marcada de tama-

ño entre el eje principal y las ramificaciones.

Filamentos con una capa parietal de citoplas-

ma, multinucleados y con numerosos cromo-

plastos discoídeos, con o sin pirenoides.

Multiplicación vegetativa mediante gran-

des zoosporas esféricas; aplanosporas y zoos-

153

poras se forman en la extremidad de un fila-

mento después de la aparición de un tabique

transversal. Reproducción sexual óogama.

Taxa citados anteriormente para Chile.

Vaucheria dillwyna (Web. et Mohr.) C.A.

Agardh (Espinosa, 1923).

Vaucheria geminata (Vaucher) DC. (Espino-

sa, 1923):

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Vaucheria racemosa (Vaucher) DC. (Borge,

1901).

Vaucheria repens Hass. (Borge, 1901; Espi-

nosa, 1923).

Vaucheria sessilis (Vaucher) DC. (Hariot,

1889).

Vaucheria subarechavelatae Borge (Borge,

1901).

Vaucheria terrestris (Vaucher) DC. (Espino-

sa, 1923).

Vaucheria geminata (Vaucher) DC.

(Figs. 7-10)

Especie monoica. Anteridios curvados en for-

ma de cuerno o caracol, ubicados en el extre-

mo de ramas erectas largas o ramas laterales

cortas; bajo él se ubican 1-6 oogonios, por lo

general, la mayoría con un estilo corto, rara-

mente estilo largo, erectos. Los planos de cur-

vatura entre anteridios y oogonios forman un

ángulo agudo. Oogonios semiesféricos o elip-

soidales, la parte plana se dispone hacia el

lado del anteridio. Las oosporas maduras son

de aspecto muy variable. Pared de las oospo-

ras con 3 capas, la capa media delgada, y la

interna presenta pocas a muchas manchas

rojas.

DIMENSIONES: Talo de 100-150 um de ancho;

oosporas 87-90 um de largo, 65-67 pm de

ancho.

HÁbriTAT: Estero Los Batros. Presente en zona

PEREIRA Y PARRA

litoral, formando parte del metafiton, sumer-

gida y semisumergida, abundante. Crece aso-

ciada a especies del género Spirogyra y a plan-

tas del género Myriophyllum.

FenoLocía: Fecha de maduración; de octubre

a noviembre.

Vauchena pachyderma Walz

(Fig. 11)

Especie monoica. Oogonios esféricos a elipsol-

dales, alargados paralelamente al talo. Oogo-

nios con pared punteada en estado maduro.

Oosporas de igual forma que los oogonios,

llenando los oogonios o algo más pequeñas,

pared con numerosas capas. Oogonios y ante-

ridios apareados. Anteridios en forma de bol-

sita, asentados en una rama erecta y curvada

en la punta.

DIMENSIONES: Talo de 40-100 ¡um de ancho;

oogonios de 90-127 jm de ancho por 65-92.5

um de alto; oosporas de 130 ¡um de largo por

90 um de alto; pared de 5-6 ¡um de grosor.

HÁBITAT: Lagunas del Sector Price. Presente

en pozas pantanosas, formando parte del me-

tafiton, sumergida y semisumergida, rara a

escasa. Crece asociada a Rhizoclomum hierogly-

phicum y a especies de los géneros Spairogyra y

Zygnema.

FenoLocía: Fecha de maduración, sep-

tiembre.

Clase:

CHLOROPHYCEAE

Orden:

ULOTHRICALES

Familia:

ULOTHRICACEAE

ULOTARIX Kútzing

Filamentos fijos al estado juvenil y sin célula

apical diferenciada siendo libre cuando adul-

tos, cilíndricos o un poco moniliformes, com-

puesto de serie de células todas semejantes.

Filamentos a veces envueltos en una vaina mu-

cosa, amorfa o estriada longitudinalmente o

transversalmente. Pared celular delgada o

gruesa, presentando muy raramente tabiques

154

en forma de H en sección óptica longitudinal.

Células uninucleadas con un cloroplasto pa-

rietal envolviendo la mitad o las 3/4 partes de

la circunferencia de la célula. Cloroplastos en

cilindro anular casi cerrado, con uno a mu-

chos pirenoides.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Ulothrix implexa (Kútzing) Kútzing (Parra

y González in Rivera et al. 1973).

Ulothrix stagnorum Kútzing (Hariot, 1889).

Ulothrix subconstricta G.S. West (Adlerstein,

1979).

Ulothrix subtilis Kútzing (Borge, 1901).

Ulothrix tenerrima (Kútzing) Kútzing (So-

lari, 1963, Adlerstein, 1979).

Ulothrix tenuisssma Kútzimg (Adlerstein,

1979).

Ulothrix vaniabilis

lari, 1963).

Ulothrix zonata (Weber et Mohr) Kútzing

(Asprey et al., 1964, Adlerstein, 1979,

Theoduloz, 1981).

(Kútzing) Kútzing (So-

Ulothrix rorida Thuret

(Fig. 12)

Filamentos uniseriados. Células cilíndricas

más anchas que largas. Cloroplastos con un

perinoide. Pared celular delgada.

DIMENSIONES: Células 5-7,5 um de ancho, 5-

6,5 ¡um de largo.

HÁBITAT: Laguna Chica de San Pedro. Pre-

sente en zona litoral, formando parte del me-

tafiton, sumergida, rara. Crece asociada a es-

pecies como Uronema confervicolum y especies

del género Oedogonium.

Ulothrix tenuissima Kútzing

(Fig. 13)

Filamentos uniseriados. Células cilíndricas

más cortas que anchas. Paredes delgadas, tabi-

ques transversales no contraídos. Cloroplastos

parietales, anulares abarcan 2/3 de la célula,

con 2 o más pirenoides.

PEREIRA Y PARRA

DIMENSIONES: Células 13,5-18 jm de ancho,

7-8 pm de largo.

HÁbrratT: Laguna Lo Galindo. Presente en

zona litoral, formando parte del metafiton,

abundante, sumergida, crece asociada con

Trnibonema affine.

Ulothrix variabilis Kútzing

(Figs. 14 y 15)

Filamentos uniseriados. Células cilíndricas,

más largas que anchas. Cloroplastos ocupan-

do la mitad del ancho de la célula y un tercio o

la mitad del largo de ésta, con un pequeño

pirenoide. Pared celular delgada.

DIMENSIONES: Células 5-6 qm de ancho, 10-

12,5 ¡ym de largo.

HÁBITAT: Laguna Quiñenco. Presente en zo-

na litoral, formando parte del metafiton, su-

mergida, escasa. Crece asociada a especies del

género Oedogontum.

Ulothrix zonata (Weber et Mohr) Kútzing

(Fig. 16)

Filamentos uniseriados. Células cilíndricas o

ligeramente contraídas a nivel de los tabiques

transversales, más cortas que anchas. Con un

cloroplasto por célula, raramente 2, ocupando

la región media de la célula, con numerosos

pirenoides. Pared celular delgada en los fila-

mentos jóvenes, engrosadas en los filamentos

adultos.

DIMENSIONES: Células 21-22 pum de ancho, 10-

12,5 de largo.

Hábitat: Laguna Grande de San Pedro. Pre-

sente en zona litoral, formando parte del me-

tafiton, sumergida y semisumergida, rara.

URONEMA Lagerheim

Filamentos cilíndricos no ramificados, fijos

por una célula basal, terminando en una célu-

la apical especial, un poco curvada y más o

menos aguda. Cloroplastos parietales reduci-

dos, con 1 ó 4 pirenoides.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Uronema africanum Borge (Thomasson,

1963).

Uronema confervicolum Lagerheim (Parra y

González, 1983).

155

Uronema confervicolum Lagerheim

(Figs. 17-19)

Filamentos uniseriados, no ramificados, rec-

tos O curvos, fijos por una célula basal en for-

ma de disco. Células cilindricas más largas que

anchas. Célula terminal ligeramente curvada,

punteaguda o roma. Cloroplastos parietales

con 1-3 pirenoides.

DIMENSIONES: Células vegetativas 5-7,5 um de

Gayana, Bot, 41(3-4): 141-200, 1984

ancho, 30-32 um de largo; célula terminal 4,5-

5 jm de ancho, 22 pm de largo; célula basal

3,5 jm de ancho, 27 ¡um de largo.

HÁBITAT: Laguna Chica de San Pedro, Lagu-

na Grande de San Pedro y Laguna Redonda.

Presente en la zona litoral, formando parte del

PEREIRA y PARRA

perifiton, sumergida, escasa a abundante, cre-

ce epífita en filamentos de Oedogonium y aso-

ciada a Bulbochaete intermedia var. depressa, Spi-

rogyra decimina y Sp. catenaeformis.

FenoLOGÍA: Durante el mes de octubre se ob-

servó zoosporulación.

Familia:

CYLINDROCAPSACEAE

CYLINDROCAPSA Reinsch

Filamento moniliforme, con células elipsoida-

les, fijo en estado juvenil; cuando adultos li-

bremente flotantes, con un cloroplasto muy

granuloso sin pirenoide. El cloroplasto es es-

trellado y central en las células jóvenes. Pared

celular gruesa estratificada, cada célula tiene

una pared particular encerrada en una envol-

tura tubulosa del filamento. Después de la

división celular, se forman 2 autosporas que se

rodean de una pared propia, sin tabique ver-

dadero y permanecen encerrados en la pared

materna. Si la división origina 4 autosporas,

estas últimas se ubican una al lado de la otra,

en pares, dando la apariencia de un filamento

pluriseriado.

Taxon citado anteriormente para Chile:

Cylindrocapsa conferta W. West (Thomasson,

1963).

Cylindrocapsa geminella Wolle

(Figs. 20-21)

Filamentos largos, compuestos de células ova-

ladas u oblongas. Pared celular con numero-

sas lamelas de muscílago. Cloroplastos densos,

generalmente oscuros y con granos de al-

midón.

DimENsIenEs: Células hasta 2 veces más largas

que anchas, de 17-22,5 fm de ancho, 27-28

um de largo.

HÁBITAT: Laguna Quiñenco y Laguna Sector

Cosmito. Presente en zona litoral, formando

parte del metafiton, sumergida y semisumer-

gida, escasa a abundante. Crece asociada a

especies, como Rhizoclontum hieroglyphicum, Si-

rogontum sticticum y a especies de los géneros

Cladophora y Spirogyra.

Orden:

CHAETOPHORALES

Familia:

CHAETOPHORACEAE

STIGEOCLONIUM Kútzing

Talo formado por una parte erecta y una par-

te postrada, el sistema postrado formado por

filamentos uniseriados, irregularmente rami-

ficados, el sistema erecto también formado

por filamentos uniseriados, raramente bise-

riados, ramificado en ramas laterales irregula-

res, sin una clara diferenciación entre rama

principal y secundaria. Las ramas terminales

terminan en pelos más o menos largos. Células

con un cloroplasto parietal con un pirenoide o

con varios pirenoides en las células más gran-

156

des. Existe también formación de estados pal-

meloides.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Stigeoclontum aestivale (Hazen) Collins (Espi-

nosa, 1923).

Stigeoclontum amoenum Kútzing (Espinosa,

1923).

Stigeoclontum fastigiatum (Ralfs) Kútzing

(Solari, 1963).

Stigeoclonium lubricum (Dilw.) Kútzing (Tho-

masson, 1963).

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Stigeoclontum tenue (Agardh) Kútzing (Bor-

ge, 1901).

Stigeoclontum tenue Kútzing

(Figs. 27-35)

Talo verde brillante, conformado por fila-

mentos delicados, simples o ramificados; ra-

mificaciones alternadas u opuestas, agudas y

terminando a veces en setas. Células largas y

cilíndricas a veces cortas y cuadradas, poco

PEREIRA Y PARRA

contraídas en sus paredes transversales.

DIMENSIONES: Células vegetativas de la rama

principal de 8-11 jm de ancho.

OBSERVACIONES: Parte del material estudiado

se observó bajo condiciones de cultivo, en los

que se observó desarrollo de estados palmeloi-

des y de filamentos tipo Schizomeris, confir-

mando lo observado anteriormente por

Campbell y Sarafis (1972).

HÁbiTaT: Laguna Lo Galindo y Laguna Gran-

de de San Pedro.

DRAPARNALDIA Bory

Filamentos ramificados, muy gelatinosos y al-

canzando algunos centímetros de largo. En la

base con algunos filamentos reptantes poco

desarrollados y con rizoides; ellos se despren-

den de un eje erecto, uniseriado, formado por

grandes células cilíndricas o en tonel teniendo

un cloroplasto parietal reducido poco colorea-

do, en anillo angosto, haciendo el contorno de

la célula y presentando digitaciones o lóbulos

con algunos pequeños pirenoides. El eje prin-

cipal, ramificado en sus ápices en ejes secun-

darios de la misma estructura. Cada ciertos

trechos se desprenden verticilos formando ra-

milletes de un color verde. Estos verticilos tie-

nen el aspecto de ramilletes muy ramificados y

están constituidos por filas uniseriadas de pe-

queñas células cilíndricas con un cloroplasto

parietal muy desarrollado con uno a tres pire-

noides. Las ramificaciones terminales se alar-

gan en un largo pelo hialino. El alga entera

está rodeada de un abundante gel.

Taxon citado anteriormente para Chile:

Draparnaldia glomereta (Vaucher) C.A.

Agardh (Borge, 1901).

Draparnaldia glomerata (Vaucher)

C.A. Agardh (Figs. 22-26)

Talo filamentoso, ramificado, eje principal

compuesto de células infladas y portando ra-

mificaciones opuestas o fascículos de ramifica-

ciones opuestas. Cloroplastos llenando ca. del

tercio de la célula.

DIMENSIONES: Células del eje principal de 45-

90 um de diámetro, células de las ramificacio-

nes O fascículos de 5-8 jm de diámetro.

HÁBITAT: Laguna Lo Galindo y Laguna Qui-

ñenco.

Orden:

OEDOGONIALES

Familia:

OEDOGONIACEAE

OEDOGONIUM Hirn

Filamentos uniseriados, no ramificados, gene-

ralmente fijos por su base. Célula basal a me-

nudo de forma cónica, en su base con numero-

sos lóbulos, a veces hemiesféricos o globosa.

Célula terminal redondeada, capitada o infla-

da, incluso a veces alargada en un cerda. Célu-

las del filamento cilíndricas o enanchadas ha-

cia el extremo anterior, donde uno o más ani-

llos de crecimiento son visibles como resultado

de las divisiones celulares. Cloroplasto reticu-

157

lar, parietal con numerosos pirenoides. Oogo-

nios presentes en la madurez, uno o varios en

cada filamento. Anteridios de las especies ma-

crándricas formados por células cortas cada

una originando uno o dos anterozoides. En

especies nanándricas los anteridios cortos se

forman en filamentos enanos que crecen epí-

fitos sobre los filamentos femeninos. Oospo-

ras de forma variada, con pared celular de 2 6

3 capas, ornamentada o lisa.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Taxa citados anteriormente para Chile:

Oedogomum capilliforme Kútzing (Borge,

1901).

Oedogontum capilliforme var. australe Wit-

trock (Borge, 1901).

Oedogonium ciliatum (Hassall) Pringsheim

(Espinosa, 1923).

Oedogontum crispum (Hassall) Wittrock (Bor-

ge, 1901).

Oedogonium fasciatum Kútzing (Solari,

1963).

Oedogonium fragile Wittrock (Borge, 1901).

Oedogontum landsboroughi (Hassall) Borge

(Solari, 1963).

Oedogontum macrandrium Wittrock (Solari,

1963)%

Oedogontum macrospermum W. et G.S. West

fma. patagonicum Borge (Borge, 1901).

Oedogonium nodulosum Wittrock (Borge,

1901).

Oedogomum pringsheumaá Cramer (Borge,

1901).

Oedogonium undulatum (Brébisson) A.

Braun (Espinosa, 1923; Thomasson, 1963;

Parra et al. 1981).

Oedogonium varians Wittrock et Lundell

(Borge, 1901).

Oedogonium alternans Wittrock et Lundell

(Figs. 38-39)

Especie dioica, nanándrica, ginandrospórica.

Oogonios solitarios, casi esféricos, abriéndose

por un poro ubicado muy alto. Oosporas esfé-

ricos, llenando completamente los oogonios,

con pared lisa y gruesa. Célula de soporte

ensanchada. Célula basal alargada. Célula ter-

minal roma. Filamentos masculinos enanos

oblongos, con el extremo inferior doblado,

ubicado en las células de soporte, con anteri-

dios internos.

DIMENSIONES: Células vegetativas 32,5-37,5 x

45-92,5 jm; Oogonios 62,5-72 Xx 75-77 um;

Oosporas 65-67 Xx 66-72,5 qm; Células de so-

porte 37,5 Xx 57,5 um. Filamentos masculinos

enanos: 12,5-15 X 45-50 qm.

HÁbrITAT: Laguna Grande de San Pedro. Pre-

sente en zona litoral, formando parte del peri-

fiton y metafiton, adheridas y fijas a trozos de

hojas de Eucalyptus y trozos de ramas secas

sumergidas, escasa a abundante. Se encontró

epifitada por Oedogontum gunnú. Crece asocia-

PEREIRA Y PARRA

158

da a otras especies del mismo género, como

Oodogontum cardiacum y O. aff. implexum.

FeEnoLoGía: Fecha de maduración: octubre.

Oedogomum cardiacum (Hassall) Wittrock

(Figs. 40-42)

Especie dioica, macrándrica. Oogonios solita-

rios, muy raro de a 2 casi esféricos o casi esfé-

rico-cordiforme, abriéndose por un poro ubi-

cado aproximadamente sobre la mitad de la

célula. Oosporas esféricas, nunca llenando los

oogonios, pared lisa. Anteridios con 1-10 célu-

las, con 2 anterozoides por tabique transver-

sal. Célula basal alargada. Célula terminal

roma.

DIMENSIONES: Células vegetativas de los fila-

mentos femeninos 20-28 X 65-125 qm y de los

filamentos masculinos 45-65 X 55-75 pum;

Oosporas 40-60 um; anteridios 15-21 Xx 9-15

pm.

HÁbiTaT: Laguna Grande de San Pedro, La-

guna Redonda, Laguna Lo Méndez, Laguna

Lo Galindo.

FenoLocía: Fecha de maduración, sep-

tiembre-octubre.

Oedogontum curvum Pringsheim

(Figs. 43-44)

Especie monoica. Oogonlios solitarios o en se-

rie de 7 juntos, esféricos deprimidos, ovoides

o casi esféricos, abriéndose por un poro ubica-

do en la parte media de la célula. Oosporas

llenando casi o totalmente los oogonios, con

pared lisa. Anteridios formados por 1-7 célu-

las, casi epíginos, con 1 anterozoide por tabi-

que horizontal. Filamentos regularmente cur-

vados especialmente en los extremos supe-

riores.

DIMENSIONES: Células vegetativas 8-10 X 18,5-

32,5 pm; oogonios 23,75-25 Xx 17,5—20 um;

oosporas 22,5 X 16 pm; anteridios 7,5-10 Xx

5,5-7,5 pm.

HÁBITAT: Laguna Grande de San Pedro y La-

guna Quiñenco. Presente en zona litoral, for-

mando parte del perifiton, sumergida y semi-

sumergida, fija y adherida a objetos sumergi-

dos como: bolsas de polietileno, trozos de ra-

mas y hojas muertas y de plantas acuáticas

vivas (epífita), escasa a abundante. Crece aso-

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PAR

ciada a Oedogontum suecicum y O. undulatum,

como también a especies de Shrogyra.

FenoLoGía: Fecha de maduración; sep-

tiembre.

Oedogontum cyathagerum Wittrock var.

ellipticum Magnus et Wille

(Figs. 45-47)

Especie dioica, nanándrica, idioandrospórica.

Oogonios solitarios, e1 series de 2 a 3, de for-

ma rectangular-elipsoidal, hasta casi elipsoi-

dales, raramente casi esférico; abriéndose por

un poro ubicado por sobre la mitad de la célu-

la. Oosporas de igual forma que los oogonios,

llenando completamente los oogonios pared

celular con tres capas. Capa externa lisa, la

mediana con 16 a 25 costillas a menudo anas-

tomosadas, la interna lisa. Célula de soporte

ensanchada. Célula terminal a menudo consti-

tuida por un oogonio, roma. Androsporangio

con numerosas células. Filamentos masculinos

enanos arqueados, en forma de vaso, ubicados

en las células de soporte, raramente sobre los

oogonios o en otras células vegetativas.

DIMENSIONES: Células vegetativas 25-30 X 56-

80 um; oogonios 62,5-70 X 62-80 um; oospo-

ras 50-60 x 62-73 yum; filamentos masculinos

enanos 12-16 x 40-52 um; células de soporte

40-45 X 66-75 um.

HÁBITAT: Laguna Lo Méndez, Laguna Lo Ga-

lindo y Lagunas Sector Price. Presente en zona

litoral, formando parte del perifiton y metafi-

ton, sumergida y semisumergida, adherida y

fija a hojas y tallos de plantas acuáticas (epífi-

ta). Crece asociada a otras especies del mismo

género, como Oedogonium vaucheri, O. cardia-

cum, O. pisanum y a Spirogyra varians, Sp. oblata

y Sp. subvelata.

FeEnoLoGía: Fecha de maduración: sep-

tiembre.

Oedogonitum gunna Wittrock

(Figs. 48-49)

Especie monoica. Oogonios solitarios, o en se-

rie de 4 casi aplastados o esféricos aplastados,

abriéndose por una grieta como tapa ubicada

en la mitad de la célula. Oosporas de la misma

RA

159

forma que los oogonios, llenándose completa-

mente con 2 capas. Pared celular lisa, la capa

externa engrosada y transparente, la interna

de color café. Anteridios casi epígenos.

DIMENSIONES: Células vegetativas 7,5-10 Xx 15-

20 um; oogonios 25 X 17 um; Oosporas 22,5

X 17,5 pm; anteridios 6 X 10-12 jm.

Hábitat: Laguna Grande de San Pedro, La-

guna La Posada. Presente en zona litoral, for-

mando parte del perifiton y metafiton, sumer-

gida y semisumergida, fija y adherida a otras

especies de Oedogonium de mayor diámetro

(Oedogonium alternans, O. cardiacum y O. aff.

implexum) y a raíces y tallos de plantas acuáticas

no arraigadas (epífita) escasa a abundante.

Crece asociada a especies del mismo género y

a especies de Spirogyra.

FenoLoGía: Fecha de maduración; no-

viembre.

Oedogomum hystricinum Transeau et Tiffany

var. excentriporum Jao (Figs. 50-54)

Especie dioica, nanándrica, idioandrospórica.

Oogonios solitarios, esféricos u ovoides inver-

tido, abriéndose por un poro ubicado un poco

sobre la mitad o en la mitad de la célula. Oos-

poras esféricas o casi esféricas, llenando com-

pletamente los oogonios. Pared celular con

dos capas, la capa externa gruesa, con finas

espinas. Célula basal alargada. Filamentos

masculinos enanos casi rectos, ubicados en las

células de soporte, con 2-3 anteridios exter-

nos. Filamentos masculinos notoriamente más

delgados que los femeninos.

DIMENSIONES: Células vegetativas de los fila-

mentos femeninos 10-15 X 75 pm y de los

filamentos masculinos 10 X 57 um; células de

soporte 17-20 x 57,5-62 um; oogonios 35-40

Xx 37-42 pm; oosporas con espinas 30-35 x 30

um; androsporangios 10-12 x 12-17 um; pie

de los filamentos masculinos enanos 7-9 X

20-30 um, anteridios 7-10 X 15-17 pum.

Hábitat: Laguna Sector Cosmito. Presente

en zona litoral, formando parte del perifiton,

sumergida y semisumergida, adherida a tallos

y restos de macrófitas acuáticas ya sea arraiga-

da o no, escasa. Crece asociada a Oedogontum

mitratum, Bulbochaete varians y B. depressa.

FenoLoGía: Fecha de maduración, octubre.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Oedogonium att. implexum Hirn

(Figs. 55-56)

Especie dioica, ginandrospórica. Oogonios so-

litarios o en series hasta 3, deprimido elipsoi-

dales u ovoides, abriéndose por una grieta

ubicada en la parte superior de la célula. Oos-

poras elipsoidales, con pared lisa, llenando los

oogonios. Androsporangios formados por

hasta 20 células, en filamentos arqueados. Fi-

lamentos masculinos enanos anchamente

ovoides unicelulares, asentados en los oogo-

nios.

DIMENSIONES: Células vegetativas 13-15 x 52-

80 hm; oogonios 35-37 X 67-70 pm; oosporas

32-40 x 42 um; filamentos masculinos enanos

10-20 x 17-25 pm.

OBSERVACIONES: Fue asignada como Oedogo-

num aff. implexum, porque exhibe filamentos

masculinos enanos más grandes que los seña-

lados en la descripción dada por Gemeinhardt

(1939), pero los demás caracteres coinciden

con los del material estudiado, como son: tipo

de abertura y posición de ésta en los oogonios,

forma y tamaño de los oogonios, forma y ta-

maño de los oosporas, pero ésta no llena los

oogonios como se señala en la descripción de

esta especie. No se observó filamentos mascu-

linos.

HáÁbiTaT: Laguna Grande de San Pedro. Pre-

sente en zona litoral, formando parte del peri-

fiton, sumergida y semisumergida, rara. Cre-

ce asociada a las siguientes especies: Oedogo-

num alternans, O. cardiacum y O. gunni.

FenoLoGía: Fecha de maduración: octubre.

Oedogonium atff. 10wense Tiffany

(Figs. 57-59)

Especie dioica, macrándrica. Oogonios solita-

rios O hasta 2, esféricos a elipsoidal esféricos,

abriéndose por una grieta ubicada en la parte

superior de la célula. Oosporas de la misma

forma de los oogonios, nunca llena totalmente

el vogonio, con pared lisa. Célula basal por lo

general alargada.

DIMENSIONES: Células vegetativas 15-20 x 60-

70 jm; oogonios 52-60 x 70-80 um.

OBSERVACIONES: Se asigna a Oedogontum 10wen-

se sobre la base de la forma y tamaños de sus

OOgonios, tipo y posición de la abertura del

oogonio. No se observó oosporas ni filamentos

masculinos.

PEREIRA Y PARRA

160

HábriraT: Laguna Sector Cosmito. Presente

en zona litoral, formando parte del perifiton y

metafiton, sumergida y semisumergida, adhe-

rida y fija a plantas acuáticas arraigadas y no

arraigadas (epífita), escasa. Crece asociada a

otras especies del mismo género como tam-

bién a especies de los géneros: Zygnema y Spiro-

gyra.

FenoLOoGÍA: Fecha de maduración; de octubre

a noviembre.

Oedogontum mitratum Hirn

(Figs. 60-61)

Especie dioica, macrándrica. Oogonios solita-

rios o en series de 4, esféricos o casi esféricos,

abriéndose por una grieta en forma de tapa,

ubicada sobre la mitad o más arriba de la célu-

la. Oosporas esféricas, o casi esféricas, llenan-

do el oogonio, con pared lisa.

DIMENSIONES: Células vegetativas 6-7,5 X

25-40 pm; oogonios 22-24 X 15-17 um; oos-

poras; 17 Xx 13-15 ¡um.

OBSERVACIONES: No se observó filamentos

masculinos en el material estudiado.

HÁBITAT: Laguna Sector Cosmito. Presente

en zona litoral, formando parte del perifiton y

metafiton, sumergida y semisumergida, adhe-

rida y fija a plantas acuáticas epífitas, rara.

Crece asociada a las siguientes especies: Oedo-

gontum hystricinum var. excentriporum, Bulbo-

chaete varians y B. depressa.

FenoLoGía: Fecha de maduración: octubre.

Oedogontum petri Wittrock

(Figs. 62-65)

Especie monoica, macrándrica. Oogonios soli-

tarios, raramente 2-3 juntos, piriformes o es-

féricos abriéndose por una grieta ubicada un

poco sobre la mitad, poco visible. Oosporas

más o menos esféricas aplastadas, llenando los

oogonios en la parte ensanchada, con pared

lisa. Anteridios 1-3 células, casi epígenos o

hipógenos, con un anterozoide. Célula basal

alargada. Célula terminal roma.

DIMENSIONES: Células vegetativas 6-7,5 Xx 32-

50 um; oogonios 25-27 X 22-27 qm; oosporas

22-25 xXx 17-20 um; anteridios 7 X 7-12 um.

HÁBITAT: Laguna Chica de San Pedro. Pre-

sente en la zona litoral, formando parte del

perifiton, sumergida y semisumergida, fija y

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

adherida a plantas de musgos y plantas de

Nitella, epífita, escasa a abundante. Crece aso-

ciada a otras especies del mismo género y a

Bulbochaete intermedia var. depressa como tam-

bién a Uronema confervicolum.

FenoLoGía: Fecha de maduración: de sep-

tiembre a octubre.

Oedogontum pisanum Wittrock

(Figs. 66-70)

Especie dioica, macrándrica. Oogonios solita-

rios, raramente en series de 2 ó 4, de forma

ovoide-elipsoidales hasta ovoides, abriéndose

por una grieta ubicada en la parte superior de

la célula. Oosporas ovoides a elipsoidales, lle-

nando casi totalmente los oogonios, con pared

lisa. Anteridios de 1-4 células, con 2 anterozoi-

des por tabique horizontal. Célula basal alar-

gada. Célula terminal en forma de pelo hia-

lino.

DIMENSIONES: Células vegetativas 10-11 x< 40-

70 pm; oogonios 27-37 Xx 27-35 um; oosporas

22-24 x 27-35 um; anteridios 10 X 5-6 jm.

OBSERVACIONES: La forma y el tamaño de los

oogonios y de las oosporas es bastante varia-

ble. Esta especie está muy próxima a Oedogo-

mum epiphyticum y se diferencia de ella espe-

cialmente por la robustez tanto de los filamen-

tos masculinos como femeninos y además en la

variada forma de oogonios y anteridios.

HáÁsiTaT: Lagunas en Sector Price. Presente

en pozas, formando parte del perifiton, su-

mergida y semisumergida, escasa. Crece fija a

filamentos moribundos de Spirogyra oblata y

asociada a especies, como Oedogonium cyathige-

rum var. ellipticum, Spirogyra subvelata, Sp. cate-

naeformis, Sp. varians y Zygnema pawneanum.

FenoLoGía: Fecha de maduración: sep-

tiembre.

Oedogonium aff. reimschu Roy

(Figs. 71-71)

Especie monoica. Oogonios solitarios o de a 2,

esféricos o aplastados esféricos u ovoides, ra-

ramente terminal, abriéndose por una grieta

ancha ubicada en la mitad. Oosporas de la

misma forma que los oogonios, no siempre lo

llenan, con pared lisa. Anteridios solitarios,

casi epíginos o casi hipóginos, con 2 anterozoi-

des por tabique horizontal. Células vegetati-

PEREIRA y PARRA

161

vas, la mayoría hexagonales, con mayor diá-

metro en la mitad de ellas, o casi elipsoidales.

Célula basal alargada, hemisférica. Célula ter-

minal roma.

DIMENSIONES: Células vegetativas 5-10 Xx 12-

PUN:

OBSERVACIONES: No se encontró filamentos

fértiles, es decir, oogonios ni anteridios. Sin

embargo, por las características vegetativas

que presentan los filamentos, como: diámetro

y largo de las células vegetativas, forma de la

célula basal y forma de la célula terminal, per-

mite asignarla a Oedogonium reimscha.

HÁbrrar: Laguna La Posada. Presente en la

zona litoral, formando parte del perifiton y

metafiton, sumergida y semisumergida, adhe-

rida y fija a raíces y tallos de plantas acuáticas

no arraigadas, epífita. Crece asociada a las

siguientes especies: Oedogonuum spirostriatum,

Bulbochaete rectangularis y Spirogyra tenuissima.

FenoLoGía: En las muestras estudiadas sólo se

observó el estado vegetativo.

Oedogomum atf. spirostriatum Tiffany

(Figs. 73-74)

Especie monoica. Oogonios solitarios, aplasta-

do esféricos, abriéndose por una grieta ubica-

da sobre la mitad de la célula. Oosporas aplas-

tadas esféricas, nunca llenando los oogonios,

con pared lisa. Anteridios solitarios intercala-

dos entre las células vegetativas, cerca de los

oogonios o esparcidos, con 1 ó 2 anterozoides.

Paredes de las células vegetativas, de los oogo-

nios y anteridios punteadas espiraladamente.

Célula basal aplastada esférica o hemiesférica

o casi esférica doblada en dirección longitudi-

nal. Célula vegetativa capitada.

DIMENSIONES: Células vegetativas 16-22 X 75-

87 jm; oogonios 48-50 x 40-45 um; oosporas

42-46 x 35-39 um.

OBSERVACIONES: No se observó anteridios en

el material estudiado, pero de acuerdo a las

características vegetativas y reproductivas fe-

meninas como, forma y ornamentación de las

células vegetativas, forma y tamaño de los oo-

gonios permiten asignarla a Oedogonium spiros-

tratum.

HÁBITAT: Laguna La Posada. Presente en la

zona litoral, formando parte del perifiton y

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

metafiton, sumergida y semisumergida, adhe-

rida y fija a raíces y tallos de plantas acuáticas

no arraigadas, epífita, rara. Crece asociada a

las siguientes especies: Oedogonium att. reims-

cha, Bulbochaete aff. praereticulata, Oedogonium

undulatum y Spirogyra tenuissima.

FenoLoGía: Fecha de maduración: febrero.

Oedogonium suecicum Wittrock

(Figs. 75-76)

Especie dioica, macrándrica. Oogonios solita-

rios, casi esférica, raramente elipsoidal-

esféricos, abriéndose por un poro situado en

la mitad de la célula. Oosporas esféricas, lle-

nando casi totalmente los oogonios, pared con

2 capas, la capa externa espinosa, la interna

lisa. Filamentos masculinos igual de ancho que

los femeninos o un poco más delgados. Ante-

ridios 2-6 células, con un anterozoide por

tabique horizontal, la mayoría en el extremo

superior de los filamentos. Célula basal alar-

gada. Célula terminal roma.

DIMENSIONES: Células vegetativas 11 x 37,5-

72,5 um; oogonios 33-37 x 32-45 um; oospo-

ras con espinas 31-37 xX 31-36 um.

OBSERVACIONES: No se observó filamentos

masculinos en el material estudiado.

HÁBITAT: Laguna Quiñenco y Laguna La Po-

sada. Presente en la zona litoral, formando

parte del perifiton y metafiton, sumergida y

semisumergida, escasa a abundante. Crece

asociada a especies como Oedogontum undula-

tum, O. aff. reimschi, O. curvum, Bulbochaete rec-

tangularis y Spirogyra tenuissima.

FenoLoGía: Fecha de maduración: de sep-

tiembre a noviembre.

Oedogonium undulatum (Brébisson) A. Braun

(Figs. 77-80)

Especie dioica, nanándrica, ginandrospórica o

idioandrospórica. Oogonios solitarios o hasta

4, raramente hasta cinco en serie, casi esférico

o elipsoidal esférico, algo aplastado, abriéndo-

se por una grieta ubicada en la parte superior

del vogonio. Oosporas esféricas o casi esférica,

la mayoría de las veces llenando el oogonio,

pared celular lisa y gruesa. Androsporangios

PEREIRA y PARRA

162

formados por 7 células. Filamentos masculi-

nos enanos alargados y cónICOSs, asentados por

lo general en la célula de soporte, raramente

en otras células vegetativas o en la cercanía de

los oogonios. Anteridios internos. Células ve-

getativas con márgenes ondulados presentan-

do cuatro notorias contricciones en ellas. Cé-

lula basal alargada; pero nunca ondulada. Cé-

lula terminal, a menudo formada por un 0o-

gonio, roma.

DIMENSIONES: Células vegetativas 15-22 x 57-

77 pm; oogonios 55 X 55-57 pm; oosporas 50

X 50 qm; filamentos masculinos enanos 7 X

37-50 ym.

HábiTaT: Laguna Redonda, Laguna La Posa-

da, Laguna Chica de San Pedro y Laguna Qui-

ñenco. Presente en la zona litoral, formando

parte del perifiton y metafiton, sumergida y

semisumergida, adherida y fija a trozos de

macrófitas acuática epífita, rara a escasa. Cre-

ce asociada a las siguientes especies: Oedogo-

num atf. remscha, Bulbochaete rectangularis, Sfr-

rogyra decimina, Sp. catenaeformas y a especies de

los géneros Zygnema y Mougeotra.

FenoLoGía: Se encuentra en estado vegetativo

de marzo a agosto para madurar entre octu-

bre y noviembre, y posteriormente decaer du-

rante los meses de verano.

Oedogonium vauchera (Le Clerc) A. Braun

(Figs. 81-82)

Especie monoica. Oogonios solitarios, casi

ovoides a casi ovoide esféricos, con un poro

ubicado muy alto en la célula. Oosporas re-

dondeadas a casi esféricas, nunca llenan los

oogonios, con pared lisa bastante gruesa. An-

teridios de l a 4 células con 2 anterozoides por

tabique transversal. Célula basal alargada.

DIMENSIONES: Células vegetativas 25-30 x 35-

100 fm; oogonios 45-70 x 50-65 um; oospo-

ras 40-45 x 40-55 um; anteridios 20-30 Xx

7-12 um.

HÁBITAT: Laguna Lo Méndez, Laguna Re-

donda.

FenoLoGía: Fecha de maduración: sep-

tiembre.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

PEREIRA Y PARRA

BULBOCHAETE C.A. Agardh

Talos fijos en su base por medio de una célula

basal lobulada. Filamentos uniseriados ramifi-

cados unilateralmente. Células vegetativas cl-

líndricas y generalmente ensanchadas hacia

arriba. Casi todas las células llevan una seta

larga con una base bulbosa, que emerge obli-

cuamente de la parte anterior de la célula.

Oogonios ovoides, oblongos o globosos. Oos-

poras generalmente llevan el oogonio, con pa-

red gruesa y comúnmente ornamentada con

poros, areolas, costillas y retículos. Especies

monoicas o dioicas nanándricas o macrándri-

cas, estas últimas poco numerosas.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Bulbochaete crenulata Pringsheim (Borge,

1901).

Bulbochaete nana Wittrock (Asprey et al.,

1964).

Bulbochaete rectangulariss Wittrock (Borge,

1901).

Bulbochaete debaryana Wittrock et Lundell

(Figs. 83-85)

Especie monoica. Oogonios elipsoidales, pos-

trado, ubicado bajo las células vegetativas o

bajo la seta terminal. Oosporas con pared ex-

terna, con costillas longitudinales. Anteridios

de una a numerosas células, postrado rara-

mente erecto, esparcido o casi epígeno.

DIMENSIONES: Células vegetativas 18-22 x 25-

30 um; oosporas 32-35 x 40-45 pm; anteri-

dios 10 X 6 um.

OBSERVACIONES: Esta especie es muy parecida

a Bulbochaete mirabilis Wittrock, pero difiere de

ésta en que los oogonios y oosporas son algo

más grandes. El material se designa como Bul-

bochaete debaryana, sobre la base de caracteres

de tipo vegetativo como: ancho y largo de las

células vegetativas y caracteres de tipo repro-

ductivo como forma de los oogonios y oospo-

ras y ornamentación de estas últimas.

HÁBITAT: Laguna Redonda. Presente en zona lito-

ral, formando parte del perifiton, sumergida, esca-

sa. Se encuentra viviendo epífitas en filamentos del

género Cladophora y Rhizoclontum. Crece asocia-

da a especies como Sp. weber, Sp. decimina, Sp.

indica, Oedogontum cardiacum y Rhizoclontum

hieroglyphicum.

FenoLoGíaA: Fecha de maduración: diciembre.

163

Bulbochaete depressa (Tatt) Tiffany

(Figs. 86-87)

Especie dioica, nanándrica, ginandrospórica.

Oogonios esféricos aplastados, terminales o

bajo las células de soporte de los vogonios que

están por sobre él, erectos o postrados. Tabi-

que de las células de soporte ubicado bajo la

mitad. Pared externa de las oosporas excava-

das. Androsporangios formados por 1-3 célu-

las, epígenos. Filamentos masculinos enanos

arqueados con anteridios externos, ubicados

en o cerca de los oogonios.

DIMENSIONES: Células vegetativas 15 x 37-45

um; oogonios 42,5 x 35-37 ym; oosporas 36-

40 x 32 qm; androsporangios 12-13 um; fila-

mentos masculinos enanos 10-11 x 22-25 um.

HÁBiTaT: Laguna Sector Cosmito. Presente

en zona litoral, formando parte del perifiton y

metafiton, fija y adherida a trozos de plantas

acuáticas vivas epífitas y trozos de vegetales

muertos, escasas, libre de epífitas. Crece aso-

ciada a las siguientes especies: Bulbochaete va-

nans y Oedogonitum hystricicum var. excentripo-

rum, como también a especies de los géneros

Zygnema y Spirogyra.

FenoLoGía: Fecha de maduración: entre oc-

tubre-noviembre.

Bulbochaete intermedia De Bary var.

depressa Wittrock (Figs. 88-91)

Especie dioica, nanándrica, ginandrospórica.

Oogonios notoriamente esféricos deprimidos,

pared de las oosporas externamente excava-

da, frecuentemente casi lisa. El tabique que

divide la célula de soporte, la mayor parte de

las veces ubicado un poco sobre la mitad, rara-

mente más abajo. Androsporangios de 1-3 cé-

lulas.

DIMENSIONES: Células vegetativas 17-22 x 37-

55 pm; oogonios 45-47 x 25-40 pm; oosporas

33 pm; androsporangios 12-15 x 11-12 um;

filamentos masculinos enanos 11-12 x 27 um.

Hábitat: Laguna Chica de San Pedro. Pre-

sente en la zona litoral, formando parte del

perifiton, sumergida y semisumergida, abun-

dante. Crece asociada a especies del mismo

género, como también a especies de los géne-

ros Zygnema, Mougeotía y Spirogyra.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

FenoLOoGÍA: Se encuentra al estado vegetativo

desde marzo a septiembre para madurar en-

tre octubre y noviembre, época en la cual al-

canza su máximo desarrollo para decaer du-

rante los meses de verano.

Bulbochaete aff. praereticulata Jao

(Fig. 92)

Especie dioica, nanándrica, idioandrospórica.

Oogonios esféricos aplastados O raramente

ovoides esféricos, postrados, ubicado bajo la

seta terminal. Tabique de la célula de soporte

ubicada en la mitad, la capa externa de la

pared de las oosporas excavadas en forma de

retículo. Androsporangios formados por 1-7

células. Filamentos masculinos enanos más

cortos que los oogonios, ubicados en ellos o

sobre la célula de soporte, con pie doblado en

ángulo recto y es dos veces más largo que los

anteridios internos. Las células vegetativas,

con excepción de la célula basal, de oogonios y

androsporangios, presentan las paredes pun-

teadas espiraladamente.

DIMENSIONES: Células vegetativas 17-20 X 45

pm.

OBSERVACIONES: Se asigna como Bulbochaete

aff. praereticulata, sobre la base de caracteres

únicamente vegetativos de las células; es decir,

ancho y largo de ellas, ausencia de ornamenta-

ción en la célula basal y, presencia de ella en las

células vegetativas. No se observaron estructu-

ras reproductoras.

HÁBITAT: Laguna La Posada. Presente en zo-

na litoral, formando parte del perifiton, su-

mergida, escasa. Se encuentra viviendo epífita

en tallos y raíces de plantas acuáticas. Crece

asociada a las siguientes especies: Bulbochaete

rectangularis, Oedogonium aff. reimscha, O. sfa-

rostriatum y Spirogyra tenuissima, como también

a especies de Zygnema.

FenoLoGía: Esta especie se detectó sólo al esta-

do vegetativo.

Bulbochaete rectangularis Wittrock

(Figs. 93-96)

Especie dioica, nanándrica, ginandrospórica;

poco ramificada, ramificación a menudo muy

larga. Células vegetativas en sección longitudi-

nal casi rectangular. Oogonios elipsoidales,

PEREIRA Y PARRA

164

postrados, raramente erectos, ubicados bajo la

seta terminal, los androsporangios ubicados

en la mitad, como también bajo las células

vegetativas. La capa externa de la pared de la

oospora con costillas longitudinales. Andros-

porangios 1-3 células, esparcidos o epígenos.

Filamentos masculinos enanos con 1-4 células.

Anteridios externos, ubicados cerca de los oo-

gonios o generalmente también sobre ellos.

DIMENSIONES: Célula vegetativa 16-18 Xx 35-50

pm; oogonios 32-35 X 45-55 pum; oosporas 30

Xx 42-47 um; androsporangios 12-15 x 17-28

um; anteridios 7 X 5 qm.

Hábitat: Laguna La Posada. Presente en zo-

na litoral, formando parte del perifiton y del

metafiton, sumergida y semisumergida, abun-

dante a escasa. Crece asociada a las siguientes

especies: Oedogonium atf. reimscha, O. spirostria-

tum, O. suecicum, Bulbochaete aff. praereticulata,

Spirogyra tenuissima, como también a especies

de los géneros Mougeotía y Zygnema.

FenoLoGía: Fecha de maduración: diciembre.

Bulbochaete varians Wittrock

(Figs. 97-99)

Especie dioica, nanándrica, ginandrospórica.

Oogonios elipsoidales hasta ovoides, postra-

dos o erectos, ubicados bajo la seta terminal, o

bajo las células androsporangiales o bajo otras

células vegetativas, capa externa de la mem-

brana de las oosporas con costillas longitudi-

nales dentiformes. Androsporangios esparci-

dos, epígenos o hipógenos, de 1-2 células. Fila-

mentos masculinos enanos con 1-2 células.

Anteridios externos, ubicados cerca o en los

OOgonios.

DIMENSIONES: Células vegetativas 15 X 40 pum;

oogonios 12 X 45-50 jm; oosporas 30-35 x

47-50 pm; androsporangios 10 x 10 um; pie

de los filamentos masculinos enanos 15 X 20-

22 hm; anteridios 7-10 X 5 pm.

HÁBiTaT: Laguna Sector Cosmito. Presente

en zona litoral, formando parte del perifiton y

metafiton, sumergida y semisumergida, fija y

adherida a plantas acuáticas no arraigadas

epífitas, escasa. Crece asociada a las siguientes

especies: Oedogonium hystricinum var. excentri-

porum y Bulbochaete depressa.

FenoLocía: Fecha de maduración: octubre.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

PEREIRA Y PARRA

Orden:

SIPHONOCLADALES (CLADOPHORALES)

Familia:

CLADOPHORACEAE

CLADOPHORA Kitzing

Talo filamentoso, monosifonoso, profusa-

mente o esparcidamente ramificado, com-

puesto de células multinucleadas con numero-

sos cloroplastos disciformes, algunos de los

cuales presentan pirenoides. Crecimiento por

divisiones apicales o intercalares. Talo a me-

nudo fijo a un sustrato por rizoides o por una

célula basal disciforme. Pared celular gruesa y

lamelada.

Taxa citados anteriormente para Chile.

Cladophora crispata (Roth) Kútzing var. bra-

chyclados Kútzing (Solari, 1963).

Cladophora fracta (Múller) Kútzing var. la-

custris (Kútzing) Brand (Borge, 1901)

Cladophora glauscescens (Griffith) J.D. Hooc-

ker et Harvey (Hariot, 1889).

Cladophora insignias (Agardh) Kútzing var.

fluviatilis (Agardh) Kútzing (Solari, 1963).

Cladophora setiformis Kútzing (Solari, 1963).

Cladophora glomerata (L.) Kútzimg

(Figs. 167-168)

Talo fijo al sustrato o libre flotante de color

verde oscuro, fofo o densamente arbuscular.

Filamentos ramificados, inserción de las rami-

ficaciones generalmente oblicuas a horizonta-

les, más raramente lateral.

DIMENSIONES: Células apicales 50-80 x 20-25

um; células del eje principal 60-90 ¡um de diá-

metro.

HÁBiTaT: Laguna Lo Méndez, Lagunas Sec-

tor Price, Laguna Sector Cosmito, Laguna

Chica de San Pedro, Laguna Redonda.

RHIZOCLONIUM Kútzing

Filamentos uniseriados, a menudo no ramift-

cados, o con ramificaciones cortas y poco nu-

merosas; fijos a su base o ligeramente flotante;

formado por células cilíndricas, alargadas.

Cloroplasto parietal, reticulado con numero-

sas pirenoides. Pared celular gruesa, a menu-

do lamelada, estratificada; pocos núcleos por

células, lo más a menudo dos o tres. Célula

basal alargada en un rizoide de fijación a veces

digitado. Con o sin rizoides secundarios pre-

sentes.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Rhizoclontum casparyi Harvey (Solari, 1923).

Rhizoclonium hieroglyphicum (C.A. Agardh)

Kútzing (Parra y González, 1983).

Rhizoclonium hieroglyphicum (C.A. Agardh)

Kútzing (Figs. 36-37)

Filamentos largos, resistentes, no ramificados.

Células generalmente más largas que anchas,

de grosor variable, con paredes lameladas o

165

estratificadas. Los cloroplastos varían con la

edad del alga, por lo general, en filamentos

jóvenes es reticular en tanto que en los fila-

mentos adultos se vuelve denso y bastante gra-

nuloso.

DIMENSIONES: Células 20-27 um de ancho,

125-207 um de largo, 2 1/2-10 veces más lar-

gas que anchas.

HÁBITAT: Lagunas Sector Price, Laguna Re-

donda y Laguna Sector Cosmito. Presente en

pozas y zona litoral, formando parte del meta-

fiton y perifiton, sumergida y semisumergida,

abundante. Crece asociada a especies como

Vaucheria pachyderma, Sirogonium sticticum y a

especies de los géneros Oedogonium, Cladopho-

ra, Zygnema y Sprirogyra.

FenoLoGía: Esta especie se mantiene a través

de todo el año, por lo tanto, se la podría consi-

derar como una especie perenne. Durante los

meses de primavera se observó un desarrollo

masivo de ellas junto a Cladophora.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

PEREIRA Y PARRA

Orden:

ZYGNEMATALES

Familia:

ZYGNEMATACEAE

ZYGNEMA C.A. Agardh

Filamentos no ramificados, con células cilín-

dricas, cortas o largas, de paredes transversa-

les planas y rodeadas por una vaina muscilagi-

nosa. Cloroplastos dos, estrellados y de posi-

ción axial, cada uno contiene un gran pirenol-

de central. Conjugación generalmente escale-

riforme, con las zigosporas formadas en los

canales de conjugación, o raramente en uno

de los gametangios. Zigosporas esféricas, ova-

das o elipsoideas, con una pared formada por

3 capas, la capa media y la externa general-

mente ornamentada. Reproducción asexual

por aplasnosporas y aquinetas.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Zygnema cruciatum (Vaucher) Agardh (Sola-

ri, 1963).

Zygnema insigne (Hassal) Kútzing (Solari,

1963, Asprey et al., 1964).

Zygnema stellinum (Vaucher) Agardh var. te-

nue (Kútzing) Kirchner (Solari, 1963).

Zygnema stellinum var. vaucheri (Agardh)

Kirchner (Asprey et al., 1964).

Zygnema vaucheri Agardh (Hariot, 1889).

Zygnema pawneanum Taft

(Figs. 100-101)

Conjugación escaleriforme. Formación de las

zigotas en uno de los gametangios. Células

receptoras hinchadas fuertemente por el lado

de la conjugación. Zigosporas esféricas, sólo

raramente elipsoidales.

DIMENSIONES: Células vegetativas 27-30 ¡um

de ancho. Zigosporas 42 x 42-50 um; mesos-

pora azul, con excavaciones de 7 um de ancho

y separadas 2,5-3 pm unas de las otras.

HÁbBiTaT: Laguna Chica de San Pedro, Lagu-

nas Sector Price, Laguna Pineda. Presente en

pozas y zona litoral, formando parte del meta-

fiton, semisumergida, escasa a abundante.

Crece asociada a especies del género Sharogyra,

como Sp. oblata, Sp. varians, Sp. subvelata, Sp.

teodoresci, como también a Zygnemopsis decussa-

ta, Mougeotía laetevirens, Oedogontum cyathige-

rum var. ellipticum y Oedogonium pisanum.

FenoLoGía: Fecha de maduración: octubre a

diciembre.

ZYGNEMOPSIS (Skuja) Transeau

Filamentos delicados, compuestos por células

cilíndricas largas, cada célula con dos cloro-

plastos estrellados cada uno con un pirenoide

central. Conjugación escaleriforme, con per-

sistencia de los gametangios, los que se llenan

con compuestos celulósicos-pécticos, general-

mente depositados en capas. Zigota se forman

en el canal de conjugación abordando a veces

los gametocitos, de forma esférica comprimi-

da o cuadradas en vista frontal. Pared de la

zigospora de tres capas, donde la capa media

puede ser lisa o variadamente ornamentada.

No había sido citado ningún taxa de este

género para el país.

166

Zygnemopsis decussata Transeau

(Figs. 103-105)

Células que conjugan, rectas o algo dobladas.

Las zigosporas se ubican en el canal de conju-

gación y se introducen un poco en los game-

tangios irregulares hasta rectangulares. Exos-

pora es gruesa café y está tapizada por excava-

ciones pequeñas.

DIMENSIONES: Células vegetativas 15-17 pm

de ancho; zigosporas 25-32,5 X 27-48 um.

HÁBITAT: Laguna Chica de San Pedro. Pre-

sente en zona litoral, formando parte del me-

tafiton, sumergida y semisumergida, escasa a

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

abundante. Crece asociada a las siguientes es-

pecies: Mougeotia laetevirens, Spirogyra gracilas y

Zignema pawneanum.

PEREIRA Y PARRA

FenoLocía: Fecha de maduración: diciembre

a enero.

MOUGEOTIA C.A. Agardh

Filamentos simples de células cilíndricas. Clo-

roplastos laminar parietal, algunas veces como

dos láminas conectadas por un puente, cada

uno con una hilera de pirenoides, ya sea axia-

les o esparcidos sobre la superficie. Conjuga-

ción generalmente escaleriforme, con la zigos-

pora formada en el canal de conjugación. Pa-

red de la zigospora lisa o variadamente orna-

mentada.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Mougeotía capucina (Bory) C.A. Agardh (As-

prey et al., 1964)

Mougeota elegantula Wittrock (Asprey et al.,

1964).

Mougeotía quadrangulata Hassall (Asprey et

al., 1964).

Mougeotía scalaris Hassall (Borge, 1901).

Mougeotia laetevirens (A. Braun) Wittrock

(Figs. 106-109)

Cloroplastos en forma de láminas, con nume-

rosos pirenoides distribuidos al azar. Conju-

gación escaleriforme. Células que conjugan

arqueadas. Zigosporas esféricas, llenando el

canal de conjugación, sin llegar a introducirse

en los gametangios. La cámara interna que

aloja las zigosporas es irregular a cilíndrica en

el plano longitudinal del canal. Mesospora

amarilla, lisa, con dos hendiduras en los bor-

des de las bases cilíndricas proyectadas hacia

adelante. Junto a las zigosporas se encuentran

partenosporas que se ubican en células acoda-

das y que por un costado están algo hinchadas.

DIMENSIONES: Células vegetativas 23-37 pm

de ancho. Zigosporas 42-53 x 42-50 um.

HáÁsrtTaT: Estero Los Batros, Laguna Chica de

San Pedro. Presente en zona litoral, formando

parte del metafiton, semisumergida, escasa.

Crece asociada a otras especies del mismo gé-

nero, como Mougeotia paludosa, M. parvula, M.

viridis; como también a Spirogyra imflata y Zyg-

nema pawneanum.

FexoLoGía: Fecha de maduración: febrero.

167

Mougeotía paludosa G.S. West

(Figs. 110-113)

Cloroplastos con 5-6 pirenoides en líneas.

Conjugación escaleriforme. Células que

conjugan fuertemente dobladas. Zigosporas

rectangulares con extremos algo recogidos. A

veces se forman cortos cuerpos en los game-

tangios adyacentes. La forma interna de la

cámara que aloja a las zigosporas es proporcio-

nal o se corresponde en la mayoría de los casos

con la forma externa de las cigotas. Exospora,

gruesa, lisa e incolora. Mesospora lisa.

DIMENSIONES: Células vegetativas 12-14 ¡um

de ancho. Zigosporas 32-38 x 32-30 ym.

Hásrtar: Estero Los Batros. Presente en zona

litoral, formando parte del metafiton, sumer-

gida y semisumergida, escasa, libre de epífitas.

Crece asociada a otras especies del mismo gé-

nero, como Mougeotia laetevirens, M. viridas; y

también a especies de Spirogyra y Tribonema.

FenoLocía: Fecha de maduración: febrero.

Mougeotía parvula Hassall

(Fig. 114)

Cloroplastos en forma de lámina con 2-7 pire-

noides en línea. Conjugación escaleriforme.

Zigosporas esféricas, llenando totalmente el

canal de conjugación. Mesospora gruesa, lisa y

café. Raramente se forman partenosporas,

ellas son elipsoidales y se ubican en células

ligeramente dobladas.

OBSERVACIONES: No se observó partenosporas

en material estudiado.

DIMENSIONES: Células vegetativas 6-7,5 um de

ancho. Zigosporas esféricas de 10 ¡um de diá-

metro.

HábrTaT: Estero Los Batros. Presente en zona

litoral, formando parte del metafiton, sumer-

gida y semisumergida, rara. Crece asociada a

las siguiente especies; Mougeotia laetevirens, M.

paludosa, M. vinidis, Sp. inflata y a especies de

Tnbonema.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

FenoLoGía: Fecha de maduración: febrero.

Mougeotia viridas (Kútzing) Wittrock

(Figs. 115-116)

Cloroplastos laminares con 4-8 pirenoides en

una línea. Conjugación escaleriforme. Las cé-

lulas que conjugan más o menos dobladas.

Zigosporas cuadradas o en forma de cojín, con

cuatro cuernos cortos. La cámara interna que

aloja las zigosporas es cóncava y aplastada en

los extremos de los cuernos. Mesospora lisa,

PEREIRA Y PARRA

incolora. No se observó partenosporas.

DIMENSIONES: Células vegetativas 7,5-10 ¡um

de ancho. Zigosporas 23-32 x 27-72 um.

HÁbitar: Estero Los Batros. Presente en la

zona litoral, formando parte del metafiton,

semisumergida, escasa. Crece asociada a otras

especies del mismo género, como Mougeotia

laetevirens, M. paludosa, M. parvula; y también a

Spirogyra inflata.

FenoLoGía: Fecha de maduración: febrero.

SPIROGYRA Link

Filamentos simples, uniseriados, a veces con

rizoides en la base. Células cilíndricas, cortas o

muy largas, con tabiques transversales planos,

o de repliegue anular, repliegue unilateral o

semirreplegado, o tabique con diafragma o

doble cofia. Cloroplasto en forma de cinta pa-

rietal espiralado, de 1 a 16 en cada célula.

Conjugación escaleriforme o lateral. Zigospo-

ras ovada subglobosas, elipsoidales u oblon-

gas; con pared celular de 3 capas; capa media

lisa u ornamentada, coloreada o no. Aplanos-

poras raras.

Taxa citados anteriormente para Chile:

Spirogyra affims (Hassall) Kútzing (Solari,

1963).

Spirogyra arcta (Agardh) Kútzing (Solari,

1963).

Sptirogyra bellis (Hassall) Cleve (Solari, 1963;

Thomasson, 1963).

Spirogyra catenaeformis (Hassall) Kútzing

(Borge, 1901; Espinosa, 1923).

Spirogyra condensata (Vaucher) Czurda (So-

lari, 1963).

Spirogyra decimina (Múller) Kútzing (Solari,

1963; Espinosa, 1923).

Spirogyra flavescens (Hassall) Kútzing (Sola-

ri, 1963).

Spirogyra inaequalis Kútzing (Solari, 1963).

Spirogyra jugalis (Dillw.) Kútzing (Solari,

1963).

Spirogyra longata (Vaucher) Kútzing (Bor-

ge, 1901; Solari, 1963).

Spirogyra mirabilis (Hassall) Kútzing (Asprey

et al., 1964).

Spirogyra neglecta (Hassall) Kútzing (Solari,

1963).

168

Spirogyra nitida (Dillw.) Link (Espinosa,

1923; Moore, 1926; Solari, 1963).

Spirogyra porticalis (Múller) Petit (Borge,

1901; Parra y González, 1978).

Spirogyra quadrata (Hassall) Petit (Borge,

1901).

Spirogyra quinina Kútzing (Solari, 1963).

Spirogyra rivularis Rabenhorst (Solari,

1963).

Spirogyra stictica (Engl. Bot.) Wille (Espino-

sa, 1923).

Spirogyra subsalsa Kútzing (Parra y Gonzá-

lez, 1978).

Spirogyra att. subvelata (Nortstedt) Krieger

(Parra y González, 1983).

Spirogyra tenuissima (Hassall) Kútzing (Bor-

ge 1901):

Spirogyra teodoresci Transeau (T'homasson,

1963).

Sptrogyra ternata Ripart (Solari, 1963).

Sptrogyra varians (Hassall) Kútzing (Borge,

1901; Espinosa, 1923).

Spirogyra catenaeformis (Hassall) Kútzing

(Figs. 117-120)

Células vegetativas 25-30 um de ancho, unión

plana, con un cloroplasto. Conjugación lateral

y escaleriforme (sólo se observó la lateral). En

la conjugación lateral, el canal sobresale un

tercio del ancho de la célula. Zigosporas elip-

soidales. Exospora delgada, lisa e incolora.

Mesospora gruesa, lisa y café, con una hendi-

dura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 25-30 um

de ancho; zigospora 27-30 x 37-52 pum.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

OBSERVACIONES: No se observó conjugación

escaleriforme, pero sí insinuación del canal de

conjugación. La hendidura presente en la me-

sospora no aparece señalada en la descripción

dada por Krieger in Kolkwitz y Krieger

(1941).

HÁbiTaT: Laguna Redonda, Laguna Lo Mén-

dez, Lagunas Sector Price. Presente en pozas y

zona litoral, formando parte del metafiton,

sumergida y semisumergida, rara. Crece aso-

ciada a especies del mismo género como Sparo-

gyra indica, Sp. weber, Sp. decimina, Sp. oblata,

Sp. subvelata, Sp. distenta, Sp. varians, y además

a Oedogonium cardiacum y a especies del género

Zygnema.

FenoLoGíA: Se presenta en estado vegetativo

desde marzo hasta agosto, para madurar en-

tre septiembre y noviembre, época en la cual

alcanza su máximo crecimiento para poste-

riormente decaer a fines del verano.

Spirogyra decimina (Múller) Kútzing

emend. Czurda (Figs. 121-123)

Células vegetativas de unión plana, con 1-2

cloroplastos. Conjugación escaleriforme. Cé-

lulas receptoras no hinchadas o sólo un poco

por el lado de la conjugación. Ambos game-

tangios participan por igual en la formación

del canal o en forma notoria la célula dadora.

Las células que permanecen vegetativas nunca

hinchadas. Zigosporas elipsoidales. Exospora

delgada, lisa e incolora. Mesospora gruesa, lisa

amarillenta, a menudo con una hendidura no-

toria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 37-38 pm

de ancho; zigospora 37,5-40 x 75-105 pm.

HÁBITAT: Laguna Redonda y Laguna Grande

de San Pedro. Presente en la zona litoral, for-

mando parte del metafiton, sumergida y semi-

sumergida, muy abundante. Crece asociada a

otras especies del mismo género como Sf. rein-

hardu, Sp. catenaeformis, Sp. webert; como tam-

bién a especies de Oedogonium.

FenoLoGíÍa: Se presenta al estado vegetativo

desde fines de febrero a agosto para madurar

de septiembre a noviembre, época en la cual

alcanza su máximo desarrollo, para decaer a

fines del verano.

PEREIRA Y PARRA

169

Spirogyra distenta Transeau

(Figs. 124-126)

Células de unión plana, 2-3 cloroplastos.

Conjugación escaleriforme. Células recepto-

ras nunca hinchadas. El canal de conjugación

se forma con la participación por igual de

ambos gametangios, las células permanecen

vegetativas pueden estar hinchadas hasta un

50%. Zigospora más o menos cilíndricas a elip-

soidales, con los polos redondeados. Exospora

delgada, lisa e incolora. Mesospora gruesa,

lisa, amarilla café, con una hendidura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 52-55 pm

d« ancho; zigospora 47-55 X 57-75 pm.

OBSERVACIONES: No se describe hendidura

para la mesospora en la descripción dada por

Krieger in Kolkwitz y Krieger (1941).

HÁBITAT: Laguna Lo Méndez y Laguna Lo

Galindo. Presente en pozas y zona litoral, for-

mando parte del metafiton, sumergida y semi-

sumergida, abundante. Crece asociada a otras

especies del mismo género, como Sp. catenae-

formas, Sp. olivascens, Sp. parvula y Sp. varians,

como también a especies de los géneros Oedo-

gonum y Cladophora.

FENOLOGÍA: Se presenta al estado vegetativo

desde abril a septiembre para madurar desde

fines de noviembre hasta comienzos de marzo.

Spirogyra gracilis (Hassall) Kútzing

(Figs. 127-128)

Células vegetativas de unión plana, con un

cloroplasto. Conjugación escaleriforme. Célu-

las receptoras hinchadas casi en un 80-100%

por el lado de la conjugación. El canal de

conjugación se forma principalmente por la

célula dadora. Las células que permanecen

vegetativas nunca hinchadas. Zigosporas elip-

soidales. Exospora delgada, lisa e incolora.

Mesospora gruesa, lisa, amarillo café.

DIMENSIONES: Células vegetativas 20-23 jm

de diámetro; zigospora 22-24 x 37-44 ¡um.

HÁBITAT: Laguna Chica de San Pedro. Pre-

sente en pozas y en la zona litoral, formando

parte del metafiton, semisumergida, escasa.

Crece asociada a otras especies del mismo gé-

nero, como también a Zygnema pawneanun,

Zygnemopsis decussata y Mougeotia laetevirens.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

FEnNOLOGÍA: Se presenta en estado vegetativo

de marzo a diciembre para madurar de enero

a febrero, época en la que alcanza su máximo

desarrollo para posteriormente decaer, a fines

del verano.

Sptrogyra indica Krieger

(Figs. 129-131)

Células vegetativas de unión plana, con un

cloroplasto. Conjugación principalmente late-

ral, raramente escaleriforme. Células recepto-

ras nunca hinchadas. En la conjugación late-

ral, el canal de conjugación sobresale 1/3 del

ancho de la célula. En la conjugación escaleri-

forme el canal es cilíndrico, se forma por am-

bos gametangios en forma equitativa y zigos-

poras elipsoidales. Exospora delgada, lisa e

incolora. Mesospora gruesa, lisa y café, gene-

ralmente con una hendidura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 36-38 ym

de ancho; zigospora 36-38 X 50-62 ym.

HÁbrITAT: Laguna Redonda y Laguna Grande

de San Pedro. Presente en la zona litoral, for-

mando parte del metafiton, sumergida y semi-

sumergida, muy abundante. Crece asociada a

otras especies del mismo género: Sp. decimina,

Sp. catenaeformas, Sp. weberi y Sp. reimharda; co-

mo también a especies de Oedogonium.

FenoLoGía: Se presenta al estado vegetativo

desde marzo a agosto para madurar desde

septiembre a noviembre, época en la cual pre-

senta su máximo desarrollo para decaer a fi-

nes del verano.

Spirogyra inflata (Vaucher) Kútzing

(Figs. 132-134)

Células vegetativas con tabiques de repliegue

anular, con un cloroplasto. Conjugación esca-

leriforme y lateral (no se observó la lateral).

Células receptoras hinchadas por todos lados,

aproximadamente hasta en un 100%. El canal

de conjugación, en la conjugación escalerifor-

me, la mayoría de las veces sólo formado por la

célula dadora. Las células que permanecen

vegetativas nunca hinchadas. Zigospora elip-

soidales. Exospora delgada, lisa e incolora.

Mesospora gruesa, lisa, café amarillenta, con

una hendidura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 17-21 pum

de ancho; zigospora 30-35 x 50-65 yum.

PEREIRA Y PARRA

170

HÁBITAT: Estero Los Batros. Presente en la

zona litoral, formando parte del metafiton,

sumergida y semisumergida, escasa. Crece

asociada a especies del mismo género, como

también a especies de los géneros: Mougeotia

laetevirens, M. parvula y M. paludosa.

FenoLoGía: Fecha de maduración: enero.

Spirogyra oblata Jao

(Figs. 137-139)

Células de unión plana, con 9-13 cloroplastos.

Conjugación escaleriforme. Célula receptora

no ensanchada. Canal de copulación formado

por ambos gametangios, y él en la mitad se

ensancha un poco. Zigosporas elipsoidales.

Exospora gruesa, lisa y estriada. Mesospora al

comienzo amarilla y con un retículo irregular,

después café dorado y con verrugas.

DIMENSIONES: Células vegetativas 90-105 ym

de ancho, zigosporas de 95-105 x 63-70 pum.

Hábitat: Lagunas Sector Price. Presente en

zona litoral formando parte del metafiton,

abundante. Crece asociada a Sp. subvelata y Sp.

vartans, así como a Rhizoclontum hieroglyphicum

y Oedogontum cyathigerum var. ellipticum.

FenoLoGía: Fecha de maduración: sep-

tiembre.

Spirogyra olivascens Rabenhorst

(Figs. 135-136)

Células vegetativas de unión plana, con un

cloroplasto. Conjugación escaleriforme. Célu-

las receptoras hinchadas por todos lados. El

canal de conjugación se forma con la partici-

pación igual de ambos gametangios. Zigospo-

ras elipsoidales, con polos redondeados. Exos-

pora delgada, lisa e incolora. Mesospora grue-

sa, lisa, amarilla hasta café.

DIMENSIONES: Células vegetativas 30-31 pum

de ancho; zigospora 34-36 x 48-50 jm.

HÁBITAT: Laguna Lo Galindo. Presente en la

zona litoral, formando parte del metafiton,

sumergida o semisumergida, escasa. Crece

asociada a otras especies del mismo género,

como a Sprirogyra distenta, Sp. parvula y Sp. va-

rians.

FenoLoGía: Fecha de maduración: octubre.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Spirogyra parvula (Transeau) Czurda

(Figs. 140-142)

Células de unión plana, con un cloroplasto.

Conjugación lateral y escaleriforme (sólo se

observó conjugación lateral). Células recepto-

ras hinchadas a ambos lados. En la conjuga-

ción lateral el canal está algo sobresaliente.

Canal de conjugación formado por ambos ga-

metangios. Zigosporas elipsoidales. Exospora

delgada, lisa e incolora. Mesospora gruesa, lisa

y café.

DIMENSIONES: Células vegetativas 20-24 pum

de ancho; zigosporas 30-32 x 47-55 ym.

HÁbrTaT: Laguna Lo Galindo y Laguna Re-

donda. Presente en zona litoral formando

parte del metafiton, sumergida y semisumer-

gida, escasa. Crece asociada a otras especies

del mismo género como: Sp. indica, Sp. decima-

na, Sp. catenaeformis, Sp. olivascens, Sp. distenta y

Spirogyra varians; como también a Draparnal-

día glomerata.

FenoLoGía: Fecha de maduración: octubre.

Spirogyra pratensiss Transeau

(Figs. 143-145)

Células con unión plana, un cloroplasto.

Conjugación lateral y escaleriforme (no se ob-

servó conjugación escaleriforme). En la conju-

gación lateral, el canal sobresale la mitad del

ancho de la célula. Las células que permane-

cen hinchadas hasta un 300%. Zigosporas

elipsoidales. Exospora delgada, lisa e incolora.

Mesospora gruesa, lisa, amarilla, con una hen-

didura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 15-20 pm

de ancho, zigosporas 25-30 x 50-80 pm.

OBSERVACIONES: El largo de las zigosporas en

el material estudiado es superior en 10 um. El

número de cloroplastos en el material estudia-

do fue sólo uno. Se señala la presencia de

hendidura en la mesospora que no aparece en

la descripción dada por Krieger in Kolkwitz y

Krieger (1941).

HÁBITAT: Laguna Quiñenco. Presente en la

zona litoral, formando parte del metafiton,

sumergida, rara. Crece asociada a otras espe-

cies del mismo género, como también a Ulo-

thnix varabilis y a especies de Oedogonium.

PEREIRA Y PARRA

171

FenoLoGía: Fecha de maduración:

tiembre.

sep-

Spirogyra remhardu Chmielewski

(Figs. 146-147)

Células de unión plana, con 4-6 cloroplastos.

Conjugación escaleriforme. El canal de conju-

gación se forma con la participación por igual

de ambos gametangios, no está nunca ensan-

chado. Células receptoras hinchadas por el

lado de la conjugación aproximadamente en

un 25-40%. Zigosporas elipsoidales. Exospora

delgada, lisa e incolora. Mesospora gruesa,

café con líneas conformando un retículo irre-

gular.

DIMENSIONES: Células vegetativas 85-93 ¡um

de ancho; zigosporas 80-82,5 X 115-117 jm.

HáÁbriTaT: Laguna Grande de San Pedro. Pre-

sente en zona litoral, formando parte del me-

tafiton, sumergida y semisumergida, abun-

dante. Crece asociada a otras especies del mis-

mo género como Sprirogyra decimina como tam-

bién a especies del género Oedogonium.

FEnoLOoGÍA: Se presenta al estado vegetativo

desde noviembre a agosto para madurar entre

septiembre y octubre, alcanzando en esta épó-

ca su máximo desarrollo para posteriormente

decaer en el verano.

Spirogyra subvelata Krieger

(Figs. 148-150)

Células con unión plana, con un cloroplasto.

Conjugación lateral y escaleriforme (sólo se

observó la lateral). Células receptoras nunca

hinchadas. En la conjugación lateral el canal

sobresale un cuarto del ancho de la célula. Las

células que permanecen vegetativas pueden

estar hinchadas. Zigosporas elipsoidales o es-

féricas. Exospora incolora, con dos capas. La

capa externa delgada y lisa, la interna gruesa

con excavaciones. Mesospora delgada, lisa,

amarilla café, frecuentemente con una hendi-

dura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 50-52 pm

de ancho; zigosporas 37-44 Xx 55 X 67 pm.

OBSERVACIONES: Se observó una gran varia-

ción de tamaño, forma y ornamentación de las

zigosporas debido probablemente a la inma-

durez de ellas. Se señala además la presencia

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

de hendidura para la mesospora que no apa-

rece mencionada en la descripción dada por

Krieger in Kolkwitz y Krieger (1941).

HÁBITAT: Lagunas Sector Price. Presente en

pozas, formando parte del metafiton, sumer-

gida y semisumergida, abundante. Crece aso-

ciada a especies del mismo género como Sp.

oblata, Sp. catenaeformis y Sp. varians como

también a especie del género Oedogonium co-

mo Oedogonium cyathigerum var. ellipticum y O.

pisanum.

FenoLoGíA: Fecha de maduración; sep-

tiembre.

Spirogyra tenuissima (Hassali) Kútzing

(Figs. 151-152)

Células de unión con repliegue anular, con un

cloroplasto. Conjugación lateral y escalerifor-

me (sólo se observó la lateral). En la conjuga-

ción lateral el canal sobresale aproximada-

mente el ancho de la célula. Zigosporas elip-

soidales. Exospora delgada, lisa e incolora.

Mesospora gruesa, lisa amarilla café, con una

hendidura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 14-16 pm

de ancho; zigosporas 25-27 X 62-67,5 jm.

HÁbrTAT: Laguna La Posada. Presente en zo-

na litoral, formando parte del metafiton, su-

mergida, escasa. Crece asociada a especies del

mismo género y también a especies de los gé-

neros Zygnema, Mougeotía, Bulbochaete y Oedo-

gonum.

FeEnOLOGÍA: Se encuentra al estado vegetativo

desde marzo a septiembre para madurar de

octubre a noviembre.

Spirogyra teodoresci Transeau

(Figs. 153-155)

Células con unión plana, con un cloroplasto.

Conjugación escaleriforme. Células recepto-

ras hinchadas por el lado de la conjugación. El

canal de conjugación se forma por la partici-

pación igual de ambos gametangios. La parte

de la célula dadora es frecuentemente más

gruesa. Zigospora elipsoidales. Exospora del-

gada, lisa e incolora. Mesospora gruesa, lisa y

amarilla.

DimENsIONES: Células vegetativas 27-30 ¡um

de ancho; zigospora 27-30 xX 40-48 pm.

PEREIRA Y PARRA

172

HÁBITAT: Laguna Pineda. Presente en pozas,

semisumergida, abundante. Crece asociada a

Zygnema pawneanum.

FenoLoGía: Fecha de maduración: sep-

tiembre.

Spirogyra varians (Hassall) Kútzing

(Figs. 156-159)

Células con unión plana, con un cloroplasto.

Conjugación sólo escaleriforme. Células re-

ceptoras sólo hinchadas fuertemente por el

lado de la conjugación. El canal de conjuga-

ción se forma con la participación más o me-

nos equitativa por ambos gametangios, es en-

sanchado por el lado de la célula receptora.

Las células que permanecen vegetativas a me-

nudo se hinchan fuertemente. Zigosporas

elipsoidales. Exospora delgada, lisa e incolora.

Mesospora gruesa, amarilla a menudo con

una hendidura notoria.

DIMENSIONES: Células vegetativas 27-35 pm

de ancho; zigosporas 28-35 x 37-45 pm.

HÁBITAT: Laguna Lo Galindo y Lagunas Sec-

tor Price. Presente en zona litoral y pozas,

formando parte del metafiton, sumergida y

semisumergida, abundante. Crece asociada a

especies del mismo género como Spirogyra

oblata, Sp. catenaeformis, Sp. subvelata y a otras

especies como Oedogontum cyathigerum var.

ellipticum y O. pisanum.

FenoLoGía: Se encuentra al estado vegetativo

de marzo a agosto para madurar entre sep-

tiembre y octubre, época en la cual alcanza su

máximo crecimiento para posteriormente de-

caer a fines del verano.

Spirogyra weberi Kútzing

(Figs. 160-162)

Células de unión con repliegue anular, con un

cloroplasto (raramente dos). Conjugación es-

caleriforme. Células receptoras, la mayoría un

poco hinchadas por el lado de las cigotas. El

canal de conjugación se forma con la partici-

pación en forma equitativa de ambos game-

tangios. Las células que permanecen vegetati-

vas sólo raramente hinchadas. Zigosporas

elipsoidales. Exospora lisa, delgada e incolora.

Mesospora gruesa, lisa, amarilla a café, a me-

nudo con una hendidura notoria. No se obser-

vó partenosporas.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PA

DIMENSIONES: Células vegetativas 25-29 ym

de ancho; zigospora 30-35 x 70-82 um.

HáÁbitTaT: Laguna Redonda. Presente en zona

litoral, formando parte del metafiton, semisu-

mergida, rara. Crece asociada a otras especies

del mismo género, como Sp. indica, Sp. decim.-

na y Sp. catenaeformas, como también a especies

RRA

de Oedogonium.

FenoLOGÍA: Se encuentra en estado vegetativo

aproximadamente desde marzo a agosto para

madurar de septiembre a noviembre; época

en la cual alcanza su máximo desarrollo para

posteriormente decaer a fines de los meses de

verano.

SIROGONIUM Kútzing

Cloroplastos numerosos (5 a 10), parietales en

cintas rectas o ligeramente recurvadas. Conju-

gación escaleriforme, sin formación de puen-

te o canal. Los filamentos entran en contacto

por acercamiento y acodamiento de ambos;

un anillo péctico rodea el espacio de conjuga-

ción sin que parezca canal. A veces una divi-

sión procede la conjugación originando una

célula estéril y un gametocito de dimensión

diferente.

Taxon citado anteriormente para Chile:

Sirogonium sticticum (Engler) Wille (Espino-

sa, 1923) como

Spirogyra stictica (Engler Bot.) Wille.

Sirogontum sticticum (Engler) Wille

(Figs. 163-166)

Células de unión plana, con cuatro cloroplas-

DISCUSION Y

Desafortunadamente no existe ningún estu-

dio taxonómico en Chile que se haya abocado

exclusivamente a estos grupos de algas, como

para poder compararlos con los resultados

aquí obtenidos. Más aún, muy poco se conoce

acerca de la distribución de estas algas en Chi-

le y por lo tanto los resultados aquí obtenidos

amplían el conocimiento en relación a la taxo-

nomía, fenología y distribución geográfica de

estas algas.

Las especies pertenecientes a los órdenes

Oedogoniales y Zygnematales, descritas en es-

te estudio y que han sido señaladas con ante-

rioridad para otros lugares del país, muestran

más o menos las mismas fechas de maduración

sexual.

La clase Chlorophyceae fue la mejor repre-

tos casi rectos. Conjugación escaleriforme. Cé-

lnlas receptoras hinchadas hasta un 50-70%.

Canal de conjugación muy ancho y corto, a

menudo casi insignificante. Las células que

conjugan se doblan. Zigosporas elipsoidales,

con polos redondeados. Exospora delgada, li-

sa e incolora. Mesospora gruesa, lisa, amarilla

café, a menudo con una hendiduda notoria.

DIMENSIONES: 52-57 X 70-82 um.

HÁBITAT: Laguna Sector Cosmito. Presente

en la zona litoral, formando parte del metafi-

ton, sumergida y semisumergida, escasa. Cre-

ce asociada a especies como Rhizoclonium hiero-

glyphicum, como también a especies de los gé-

neros Cladophora, Zygnema y Spirogyra.

FenoLoGía: Fecha de maduración: de enero a

febrero.

' CONCLUSIONES

E75

sentada en los cuerpos de agua estudiados y en

ella destacaron cinco familias: Ulothricaceae

con 5 especies, Cladophoraceae con 2 especies,

Oedogoniaceae con 19 especies y 3 variedades, y

finalmente Zygnemataceae con 23 especies. La

clase Xanthophyceae sólo estuvo representada

por dos familias: Tribonemataceae con 4 espe-

cies y Vaucheriaceae con 2 especies.

Los géneros de algas filamentosas predomi-

nantes en los cuerpos de agua estudiados son

Spirogyra y Oedogonium, tanto en número de

taxa como en abundancia.

Las especies más frecuentes en los cuerpos

estudiados son Uronema confervicolum, Clado-

phora glomerata, Rhizoclonium hieroglyphicum,

Oedogonium cardiacum, O. undulatum, Zygnema

pawneanum y Spirogyra catenaeformis.

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Entre las especies escasas se pueden seña-

lar: Spirogyra decimina, Sp. varians, Sp. dastenta,

Oedogonium suecicum, y entre las especies raras

están Spirogyra tenuissima, Zygnemopsis decussa-

ta, Sirogontum sticticum, Mougeotía vinidas, Oedo-

gontum pisanum y O. hystricinum var. excentri-

porum.

Uronema confervicolum, Ulothricaceae fila-

mentosa, se presentó siempre como epífita en

filamentos del género Oedogonium. Un tipo de

asociación similar es señalado por T'homasson

(1963) para una especie afín. Uronema africa-

num, en filamentos del mismo género.

Es importante señalar la presencia de Oedo-

gontum pisanum como epífita en filamentos

moribundos de Sprirogyra oblata, puesto que en

la literatura se indica como muy excepcional la

presencia de epífitas en representantes del

Orden Zygnematales.

Según las fechas de maduración sexual re-

gistradas en este estudio, se puede indicar que

la mayoría de las especies del Orden Oedogo-

niales maduran preferentemente entre fines

de invierno y durante la primavera; las espe-

cies del Orden Zygnematales maduran de pre-

ferencia durante la primavera, existiendo un

número considerable de ellas que maduran

durante los meses de verano, y finalmente las

especies del Orden Vaucheriales maduran

durante el invierno y la estación de primavera.

Schizomeris leibleimua, especie descrita por

PEREIRA Y PARRA

Kútzing en el año 1843, ha sido clasificada en

varias familias, como por ejemplo en la familia

Ulothricaceae (Fritch, 1935) del Orden Ulo-

thricales, en la familia Schizomeridaceae (Smith,

1950) o en la familia Ulvaceae (Bourrelly,

1966) del Orden Ulvales. En relación con los

resultados obtenidos en este estudio a través

de cultivo y observaciones en terreno, se pudo

constatar que corresponde a una forma adop-

tada por Stigeoclontum tenue bajo condiciones

desfavorables. De esta manera se corrobora la

interpretación dada por Campbell y Sarafis

(1972).

Ciertas especies de los Ordenes Oedogonia-

les, Zygnematales y Cladophorales se desarro-

llan masivamente en cuerpos de agua altera-

dos por el hombre, durante las estaciones de

primavera y verano. Ellas son: Spirogyra deci-

mina, Sp. indica, Sp. rermnharda, Rhizoclontum hie-

roglyphicum y Cladophora glomerata.

Finalmente, y a modo de sugerencia, se

puede agregar que para facilitar el estudio

taxonómico de las algas filamentosas del meta-

fiton y perifiton, debe contemplarse la realiza-

ción de un muestreo de periodicidad a lo me-

nos estacional y de duración anual, o por lo

menos intensificar el muestreo durante la

época primavera-verano, estaciones en las

cuales maduran la mayoría de las especies que

componen este tipo de comunidad.

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a s. 1-2. Tribonema affine (G.S. West) G.S. Wes Ea to con cloroplastos. Fic. 3. Tribonema ambiguum Skuja: filamentos

n clor LEER s. FIG. 4. ciéS nus (Klebs Bas n: filamentos con me roplastos. Fics. 5-6. Tribonema regulare pis

cloroplast

en

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

11

Fics. 7-10. Vaucheria geminata (Vaucher) D.C.: porción del talo con oogonios y anteridios. FIG. 11. Vauchera pachyderma

Walz: porción del talo con un oogonio y un anteridio; en el oogonio se encuentra una OOSpora.

178

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fic. 12. Ulothrix rorida Thuret: filamento con cloroplastos. Fic. 13. Ulothrix tenuissima Kútzing: filamentos con cloroplas-

tos. Fics. 14-15. Ulothrix variabilis Kútzing: filamentos con cloroplastos. Fic. 16. Ulothrix zonata (Weber et Mohr) Kútzing:

filamentos con cloroplastos. Fics. 17-19. Uronema confervicolum Lagerheim: 17, 18, parte del filamento mostrando los

cloroplastos; 19, filamento fijado a una célula de Oedogonium sp. Fics. 20-21. Cylindrocapsa geminella Wolle: filamentos con

células maduras. -

179

PEREIRA Y PARRA

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

Fics. 22-26. Draparnaldia glomerata (Vaucher) C.A. Agardh. 22, 25: aspecto general de una parte de talo con el eje

principal y ramificaciones; células del eje principal muestran los cloroplastos; 23, 24 y 26: formación de hipnosporas.

180

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 27-29. Stigeoclonium tenue (C.A. Agardh) Kútzing: aspecto general, mostrando célula de fijación, ramificaciones,

cloroplastos.

181

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

El

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30

N

39

Fics. 30-35. Stigeoclomum tenue (C.A. Agardh) Kútzing: 30: célula de fijación; 31, 32: parte del filamento mostrando

células con sus cloroplastos; 33, 34: parte del talo multiseriado; 35: formación de zoosporas. Fics. 36-37. Rhizoclontum

hieroglyphicum (C.A. Agardh) Kútzing: 36: porción del filamento mostrando cloroplasto; 37: detalle de una célula

cenocítica.

182

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 38-39. Oedogonium alternans Wittrock et Lundell: 38: parte del filamento mostrando oogonio y filamentos enanos;

39: célula basal. Fics. 40-42. Oedogonium cardiacum (Hassall) Wittrock: 40: filamento con oogonio y células con los

cloroplastos; 41: filamento con anteridios; 42: célula basal. Fics. 43-44. Oedogonium curvum Pringsheim: filamentos con

oogonios y anteridios. Fics. 45-47. Oedogonium cyathigerum Witrock var. ellipticum Magnus et Wille: 45, 46: filamentos con

oogonios y filamentos masculinos enanos adosados; 47: detalle célula basal. Fics. 48-49. Oedogonium gunni Wittrock:

filamentos con oogonios.

183

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

59

Fics. 50-54. Oedogonium hystricinum Transeau et Tiffany var. excentriporum Jao: 50: célula basal; 51, 52: filamentos con

androsporangios; filamentos con oogonios maduros y filamentos masculinos enanos. Fics. 55-56. Oedogonium aff.

implexum Hirn: filamentos con oogonios maduros y filamentos masculinos enanos. Fics. 57-59. Oedogonium aff. t0wense

Tiffany: 57: célula apical de un filamento; 58: filamento con un oogonio; 59: célula basal. Fis. 60-61. Oedogonium

mitratum Hirn: 60: filamento juvenil; 61: filamento con un oogonio.

184

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

70

75

Fics. 62-65. Oedogonium petri Wittrock: 62: parte basal de un tilamento; 63: tilamento con oogomos y anteridios; 64:

filamento con tres oogonios; 65: parte apical del filamento. Fics. 66-70. Oedogonium pisanum Wittrock: 66, 68: filamentos

con oogonios; 67,69: filamentos con anteridios; 70: parte basal de un filamento. Fics. 71-72. Oedogonium aff. reinschii Roy:

71: parte basal de un filamento; 72: células intercalares de un filamento. Fics. 73-74. Oedogontum atf. spirostriatum

Tiffany: 73: parte de un filamento; 74: filamento con un oogonio. Fics. 75-76. Oedogonium suecicum Wittrock: filamentos

con oosporas maduras.

185

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

Fics. 77-80. Oedogonium undulatum (Brébisson) A. Braun: 77: parte apical de un filamento; 78: parte basal; 79: filamento

con oogonio y filamento enano. Fics. 81-82. Oedogonium vaucherii (Le Clerc) A. Braun: filamentos con oogonios y

filamentos enanos masculinos. Fics. 83-85. Bulbochaete aff. debaryana Wittrock et Lundell: detalle de filamentos ramifica-

dos con oogonios.

186

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 86-87. Bulbochaete depressa (Taft) Tiffany: 86: filamento con androsporangio y oogonios; 87: parte basal de un

filamento. Fics. 88-91. Bulbochaete intermedia De Bary var. depressa Wittrock: 88: parte de un filamento mostrando

androsporangio, oogonio y filamento masculino enano; 89: parte de un filamento; 90: parte basal de un filamento; 91:

parte de un filamento mostrando oogonios y androsporangios.

187

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

F16. 92. Bulbochaete aff. praereticulata Jao: parte basal de un filamento. FIGS. 93-96. Bulbochaete rectangularis Wittrock: 93:

amen 1 sculinos enanos. Fics. 97-99. Bulbochaete

parte basal de un filamento; 94, 96: filamentos con oogonios y filamentos ma

ans Wi : fl lOs y li

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 100-102. Zygnema pawneanum Taft: 100: parte de un filamento; 101, 102: filamentos con zigosporas maduras. Fics.

103-105. Zygnemopsis decussata Transeau: filamentos con zigosporas maduras. Fics. 106-107. Mougeotia laetevirens (A.

Braun) Wittrock: 106: filamentos en conjugación; 107: filamento mostrando célula vegetativa con su cloroplasto.

189

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

108

112

Fics. 108-109. Mougeotia laetevirens (A. Braun) Wittrock: filamento con zigosporas maduras. Fis. 110-113. Mougeotia

paludosa G.S. West: 110: filamentos en conjugación; 111, 112: filamentos con zigosporas maduras; 113: célula vegetativa.

Fic. 114. Mougeotia parvula Hassall: filamento con zigospora. Fics. 115-116. Mougeotia viridas (Kútzing) Wittrock:

filamentos con zigosporas maduras.

190

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 117-120. Spirogyra catenaeformis (Hassall) Kútzing: 117, 118: zigosporas maduras; 119: filamentos en conjugación;

120: células vegetativas. Fics. 121-123. Spirogyra decimina (Mueller) Kútzing emend. Czurda: 121, 123: filamentos con

zigosporas maduras; 122: células vegativas. FiG. 124: Spirogyra distenta Transeau: células vegetativas.

191

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

Frús. 125-126. Spirogyra distenta Transeau: 125: filamentos con zigosporas maduras; 126: célula vegetativa. Fics. 127-128.

Spirogyra gracilis (Hassall) Kútzing: 127: filamentos con zigosporas maduras; 128: filamento con células vegetativas. Fics.

129-130. Spirogyra indica Krieger: filamentos con zigosporas maduras.

192

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fi. 131. Spirogyra indica Krieger: filamentos conjugantes con zigospora. Fics. 132-134. Spirogyra inflata (Vaucher)

Kiitzing: filamentos conjugantes con zigospora. Fics. 135-136. Spirogyra olwvascens Rabenhorst: 135: célula vegetativa;

136: filamentos conjugantes con zigosporas.

193

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA y PARRA

Fics. 137-139. Spirogyra oblata Jao: 137: célula vegetativa; 138, 139: filamentos conjugantes con zigosporas maduras. FiGs.

140-142. Spirogyra parvula (Transeau) Czurda: 140, 142: filamentos con zigosporas; 141: célula vegetativa.

194

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

PEREIRA Y PARRA

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148

Fics. 143-145. Spirogyra pratensis Transeau: 143, 145: células vegetativas; 144: célula con zigospora. Fics. 146-147.

Spirogyra reinhardii Chmiiewski: 146: filamentos conjugados; 147: filamentos conjugantes con zigospora madura. Fics.

148-150. Spirogyra subvelata Krieger: filamentos con algunas zigosporas maduras.

195

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 151-152. Spirogyra tenuissima (Hassall) Kútzing: 151: célula vegetativa; 152: parte del filamento con zigospora. Fics.

153-155. Spirogyra teodoresci Transeau: 153: células vegetativas; 154, 155: filamentos conjugantes. FIGs. 156-159. Spirogyra

varians (Hassall) Kitzing: 156: células vegetativas; 157-159: filamentos conjugantes con células vegetativas.

196

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 160-162. Spirogyra weberi Kútzing: 160, 162: filamentos con zigosporas; 161: células vegetativas. Fics. 163-166.

Sirogonium sticticum (Engler) Wille: 163, 164, 166: zigosporas; 165: célula vegetativa.

197

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Fics. 167-168. Cladophora glomerata (L.) Kútzing: 167: aspecto general; 168: detalle de una célula cenocítica.

198

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984

BULBOCHAETE

> A

. crenulata, 163

. debaryana, 163

. depressa, 163

. intermedia var. depressa, 163

. nana, 163

. aff. praereticulata, 164

. rectangularis, 163, 164

. varians, 164

CLADOPHORA

G.

enispata, 165

C. fracta, 165

C.

glaucescens, 165

C. glomerata, 165

G,

C.

insigmas, 165

setiformas, 165

CYLINDROCAPSA

C.

conferta, 156

geminella, 156

DRAPARNALDIA

D.

glomerata, 157

MOUGEOTIA

XXIXIXSEZES

. capucina, 167

. elegantula, 167

. laetevirens, 167

. paludosa, 167

. parvula, 167

. quadrangulata, 167

. scalaris, 167

. viridis, 168

OEDOGONIUM

O

. alternans, 158

O. capilliforme, 158

SISSI O ISS SISISISOOSIS

. capalliforme var. australe, 158

. cardiacum, 158

. cillatum, 158

. curvum, 158

. crispum, 158

. cyathygerum var. ellipticum, 159

. fasciatum, 158

. fracile, 158

. gunna, 159

. hystricinum var. exentriporum, 159 Sp. subsalsa, 168

. aft. implexum, 160

. aff. ¿owense, 160

. landsboroughi, 158

. macrandrium, 158

PEREIRA Y PARRA

INDICE DE TAXA

O. macrospermum, 158

O. mitratum, 160

O. nodulosum, 158

O. petra, 160

O. pisanum, 161

O. pringshema, 158

O. aff. remschu, 161

O. spirostriatum, 161

O. suecicum, 162

O. undulatum, 158, 162

O. vaucherú, 162

O. varians, 158

RHIZOCLONIUM

Ide caspary, 165

R. hieroglyphicum, 165

SIROGNIUM

S. sticticum, 173

SPIROGYRA

Sp. affimis, 168

Sp. arcta, 168

Sp. bellas, 168

Sp. catenaeformas, 168

Sp. condensata, 168, 169

Sp. decimina, 168, 169

Sp. distenta, 168, 169

Sp. flavescens, 168

Sp. gracilis, 168, 169

Sp. inaequalis, 168

Sp. indica, 170

Sp. inflata, 170

Sp. jugalis, 168

Sp. longata, 168

Sp. mirabilis, 168

Sp. neglecta, 168

Sp. mtida, 168

Sp. oblata, 170

Sp. olivascens, 170

Sp. parvula, 171

Sp. porticalas, 168

Sp. pratensis, 171

Sp. quadrata, 168

Sp. quinima, 168

Sp. reimharda, 171

Sp. rivularis, 168

Sp. stictica, 168

Sp. aff. subvelata, 168, 171

Sp. tenuissima, 168, 172

Sp. teodoresci, 168, 172

Sp. ternata, 168

199

Gayana, Bot. 41(3-4): 141-200, 1984 PEREIRA Y PARRA

Sp. varians, 168, 172 URONEMA

Sp. weberi, 172

U. africanum, 155

U. conferuicolum, 155

STIGEOCLONIUM

S. aestivale, 156

S. amoenum, 156 VAUCHERIA

S. fastigiatum, 156 o do

V. dillwynii, 153

S. lubricum, 156 o

V. geminata, 153, 154

S. tenue, 157 V. pachyderma, 154

V. racemosa, 154

TRIBONEMA V. repens, 154

T. aequale, 152 V. sessilis, 154

T. affine, 152 V. subarechavelatae, 154

T. ambiguum, 153 V. terrestris, 154

T. elongatum, 152

T. minus, 153

T. regulare, 153 ZYGNEMA

Z. cruciatum, 166

ULOTHRIX

insigne, 166

Z

U. implexa, 155 Z. pawneanum, 166

U. rorida, 155 Z. stellinum, 166

U. stagnorum, 155 Z. stellinum var. vaucherú, 166

U. subconstricta, 155 Z. vauchera, 166

Ú. subtilis, 155

U. tenerrma, 155

U. tenuissima, 155 e a

Ú. variabilis, 155 ZYGNEMOPSIS

U. zonata, 155 Z. decussata, 166

200

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

THEODULOZ Y PARRA

ISSN 0016-5301

DESMIDIACEAS (SACCODERMAE Y PLACODERMAE) DE CHILE.

IV. DESMIDIACEAS DEL SISTEMA

DE LAGOS DE LA CORDILLERA DEL PAINE Y ALREDEDORES*

DESMIDS (SACCODERMAE AND PLACODERMAE) OF CHILE.

IV. DESMIDS OF THE LAKES SYSTEM

OF CORDILLERA DEL PAINE AND PROXIMITY

por

Cristina Theoduloz y Oscar O. Parra**

RESUMEN

Se hace un estudio taxonómico de las desmidiaceas fito-

planctónicas de un sistema de lagos del extremo sur de

Chile. Se determinaron 58 taxones pertenecientes a 9

géneros de desmidiaceae. Se presenta también una sinop-

sis de la flora desmidiológica de la región austral de Chile

(4815'S y 54*38'S).

ABSTRACT

A taxonomical study about the planktonic desmidiaceae

of a lake system localized in the extreme south of Chile was

carried out. A total of 58 taxa beloging to 9 genera was

determined. An analysis of the desmidiological flora of

the southern area of Chile (48”15'S and 54738'S) is pre-

sented.

KEY WORDS: desmidiaceae, taxonomy, geographical dis-

tribution, Chile.

INTRODUCCION

Durante enero y febrero de 1981, se efectuó

una expedición botánica a la región austral de

Chile, con el objeto de obtener muestras fito-

planctónicas en una región poco conocida des-

de el punto de vista limnológico.

El área muestreada (Fig. 1) corresponde a

las de los principales cuerpos de agua que

constituyen el sistema de lagos de la Cordillera

del Paine y algunos cuerpos de agua localiza-

dos cerca de la ciudad de Punta Arenas y el

pueblo de Puerto Natales.

* Esta investigación forma parte del Proyecto 2.08.95

financiado por la Dirección de Investigación de la

Universidad de Concepción.

** Departamento de Botánica, Casilla 2407, Universidad

de Concepción, Concepción, Chile.

201

Es importante destacar que esta área es una

de las menos afectadas por la actividad del

hombre y ha sido declarada Parque Nacional.

Como referencia de carácter ficológico pa-

ra la región tenemos las de Asprey et al., 1964;

Borge, 1901, 1906; Cleve, 1900; Cleve-Euler,

1948; De Toni, 1889; Frenguelli, 1923; Mú-

ller, 1909 y, Thomasson, 1955, 1957.

Este trabajo constituye la cuarta contribu-

ción de nuestro grupo sobre las desmidiaceas

de Chile (Parra, 1975, 1977; Parra y González,

1977) y tiene por objetivo incrementar el co-

nocimiento florístico de los cuerpos acuáticos

del país en general y el de obtener, en un

futuro próximo, la flora desmidiológica de

Chile.

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

THEODULOZ y PARRA

MATERIALES Y METODOS

El material analizado en el presente estudio

corresponde a muestras de plancton superfi-

cial, recolectadas durante enero y febrero de

1981. La toma de las muestras se hizo desde la

orilla, utilizando una red de 35 ym de trama.

Posteriormente, las muestras fueron fijadas

con solución de Lugol (Utermóhl, 1958) para

su preservación.

Paralelo a la recolección de las muestras se

determinaron algunos parámetros abióticos:

temperatura, pH y oxígeno disuelto en el

medio.

La temperatura fue medida con un termó-

metro de 0,1%C de sensibilidad. El pH fue

determinado con un medidor portátil, Knick

Portamess 902, de una sensibilidad de 0,01. El

oxígeno disuelto en el medio, fue determina-

do con un Kit limnológico Ecologic Instru-

ment Corp., usando un Test Set específico.

Las concentraciones del oxígeno disuelto en el

agua se expresan en mg Oy/l. Las determina-

ciones fueron hechas por triplicado.

Las observaciones de las muestras se reali-

zaron con un microscopio Zeiss W.L. equipa-

do con contraste de fase y de interferencia

según Normarski y de equipo de fotomicro-

grafía.

Las muestras se depositaron en la colección

permanente de Botánica (FIcoTECA) de la Uni-

versidad de Concepción, Chile.

El trazo adjunto a cada figura corresponde

a 10 um.

DescRIPCIÓN DE LOS LUGARES ESTUDIADOS

(Fig. 1)

Lago Sarmiento. Lago extenso, sin desagúe, de

aproximadamente 24 km. de largo, y unos 7

km. en su parte más ancha; se encuentra al

este del río Paine y al norte de la Sierra del lago

del Toro (51%04'S, 72%45'W).

Lago Nordenskjóld. Es un lago que se encuentra

en el curso inferior del río Paine. Tiene unos

15 km. de largo y unos 26 km. en su parte más

ancha (51%01'S, 72%55'W).

Lago Porteño. Lago de corta extensión, de

202

aproximadamente 12 km. de largo y 6 km. en

su parte más ancha; se encuentra allegado a la

ribera sur del lago del Toro del que es tributa-

no (91208; 72-19W).

Lago del Toro. El lago más grande del sistema,

175 km?, de aproximadamente 30 km. de lar-

go y de unos 10 km. en su parte más ancha. Se

ubica al pie sur de la sierra del mismo nombre,

desagua en su extremidad oeste por el río

Serrano, al seno de Ultima Esperanza

(519145, 72%45'W).

Lago de Grey. Lago de mediana extensión, de

aproximadamente 15 km. de largo y de 4 km.

en su parte más ancha. Este lago recibe los

residuos de extensos campos de nieve y ventis-

queros y se encuentra entre el cerro Zapato y

el lago Pehoe (51%04'S, 73%09'W).

Lago Pehoe. Lago de mediana extensión, 8 km.

de largo y 3 km. en su parte más ancha. Recibe

del norte el desagúe del lago Skottsberg y de-

semboca en el río Paine (51%06'S, 73%04'W).

Laguna Figueroa. Laguna aproximadamente

de unos 2 km. de largo y de 0,8 km. de ancho,

se ubica a unos 37 km. al norte de Puerto

Natales (51%25'S, 72%21"W).

Laguna cerca de Puerto Natales. A unos 1.200

metros al este de Puerto Natales se ubican

varias lagunas pequeñas, de las cuales una de

ellas fue muestreada (51%43'S, 72%26'W).

Laguna temporal de Tres Puentes. En el sector de

Tres Puentes se forman varias lagunas tempo-

rales o semitemporales cuyas dimensiones va-

rían en el transcurso del año. Una laguna de

este conjunto fue muestreada y está ubicada a

unos 4 km. al noreste (53%08'S, 70%55'W).

Laguna Lynch. Laguna pequeña de unos 250

metros de largo por 200 m. de ancho, ubicada

a unos 4,5 km. al suroeste de la ciudad de

Punta Arenas (53%40'S, 70%58"W).

Laguna Ojo de Mar. Laguna pequeña, de apro-

ximadamente unos 180 metros de diámetro,

ubicada a unos 50 km. al sur de la ciudad de

Punta Arenas (53%40'S, 70%58"W).

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

MAPA'DE [CHILE

CONTINENTAL

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THEODULOZ Y PARRA

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Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

THEODULOZ y PARRA

RESULTADOS

1. PARTE GENERAL

Se determinó un total de 56 taxa de desmidia-

ceae pertenecientes a 9 géneros, siendo Closte-

rrum, Cosmartum y Staurastrum, los mejor re-

presentados (Tabla I).

Tabla 1

NUMERO DE TAXA POR GENEROS

Género N? de taxa

Gonatozygon l

Closterium 12

Euastrum 1

Cosmarium 18

Staurastrum 15

Staurodesmus 6

Sphaerozosma l

Hyalotheca 1

Teilingia 1

La Tabla II presenta la distribución de los

géneros con el número de sus respectivos ta-

xas en los diferentes cuerpos de agua estu-

diados.

El género Staurastrum estuvo presente en

todos los cuerpos de agua; Cosmarium, Closte-

rrum y Staurodesmus lo hicieron en muchos de

ellos. Hyalotheca a pesar de estar representada

por solamente un taxon, presentó una alta

frecuencia si lo comparamos con Gonatozygo0n,

Sphaerozosma y Teilingra.

El cuerpo de agua que presentó el mayor

número de taxa fue Laguna Rubens, seguido

por Lago Toro, Laguna Ojo de Mar y Lago

Porteño. Por el contrario, en el Lago No-

denskjóld y Laguna en Tres Puentes, se en-

contró un escaso número y en el Lago Grey no

se encontró ningún organismo vivo, segura-

mente debido a las bajas temperaturas de sus

aguas.

La Tabla 111 representa la lista completa de

los taxa determinados y su respectiva distribu-

ción en los cuerpos de agua estudiados.

Por último la Tabla IV muestra los valores

de los tres parámetros abióticos determi-

nados.

2. PARTE TAXONÓMICA

El ordenamiento sistemático de los géneros

tratados en el presente trabajo se hace según

lo propuesto por Bourrelly (1966). Las espe-

cies dentro de los géneros están ordenadas

alfabéticamente.

Abreviaciones usadas:

lat. ap. = ancho ápices

lat. cell. = ancho celular

lat. c. proc. = ancho con procesos

lat. s. proc. = ancho sin procesos

lat. isth. = ancho istmo

long. cell. = longitud celular.

Todas las dimensiones son dadas en micróme-

tros (um).

Tabla II

DISTRIBUCION DE LOS TAXA POR GENEROS EN LOS CUERPOS DE AGUAS ESTUDIADOS

Laguna Laguna

A

kjóld de Mar Puentes

Gonatozygon 1

Closterium 2 3 ] 4 2 9 3 1

Euastrum 1 1

Cosmarium 2 7 ! 2 5 6 l 10 2

Staurastrum 4 3 1 4 5 2 6 l 6 5

Staurodesmus 1 S 1 4 6 2 2 3

Sphaerozosma l

Hyalotheca 1 1 l 1 l ] l

Teilingia 1 l

ToTAL 10 14 3 14 17 15 9 6 25 2

THEODULOZ Y PARRA

1984

201-224,

41(3-4):

Gayana, Bot.

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Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

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Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

THEODULOZ Y PARRA

Tabla IV

VALORES DE LOS PARAMETROS ABIOTICOS

Cuerpo de agua pH TC O mg/l

Lago Sarmiento 7,00 22,0 10,8

Lago Pehoe 7,50 15,0 11,2

Lago Nordenskjóld 7,55 12,3 12,0

Lago Porteño 7,00 15,7 11,0

Lago Toro 7,55 12,0 11,2

Laguna Ojo de Mar 6,50 15,0 —

Laguna Lynch 5,55 11,0 —

Laguna Tres Puentes 6,00 12,0 11,6

Laguna ca. Puerto Natales 7,50 17,0 10,5

Laguna Figueroa 7,50 18,5 11,4

Lago de Grey 6,00 8,0 —

— indica que no se obtuvo datos.

Clase:

CHLOROPHYCEAE

Orden:

ZYGNEMATALES

Familia:

MESOTAENIACEAE

(Desmidiaceae Saccodermae)

GONATOZYGON De Bary

Gonatozygon monotaentum De Bary var. monolae-

mum (Fig. 1).

Long. cell. 130-150 jm, lat. cell. 12-14 um.

Laguna ca. Puerto Natales.

Familia:

DESMIDIACEAE

(Desmidiaceae-Placodermae)

CLOSTERIUM Nitzsch

Closterium acerosum (Schrank) Ehrenberg ex

Ralfs var. acerosum (Fig. 2).

Long. cell. 650 ¡um, lat. cell. 24 um, lat. ap.

10 ¡um.

Lagunas Ojo de Mar, Tres Puentes y ca.

Puerto Natales.

Closternum acerosum var. borge: Krieger (Figs.

3-4).

Long. cell. 520 jm, lat. cell. 24 um, lat. ap.

11 um.

Lago Sarmiento.

Clostertum aciculare T. West var. aciculare (Figs.

5-6).

Long. cell. 540 pm, lat. cell. 7,5 pm, lat. ap.

3 ym.

207

Lagunas Lynch y Figueroa, Lago Sar-

miento.

Closterium idiosporum W. et G.S. West var. 1dios-

porum (Figs. 7-8).

Long. cell. 220 ym, lat. cell. 15 pm, lat. ap. 2

um.

Lago Porteño.

Closterium incurvum Brébisson var. incurvum

(Fig 9)

Long. cell. 60 pm, lat. cell. 10 jm, lat. ap. 3

um.

Laguna Ojo de Mar y Lago Porteño.

Clostertum kuetzingú Brébisson var. kuetzngu

(Figs. 10-11).

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

Long. cell. 340-360 jm, lat. cell. 20 um, lat.

ap. 3 pm.

Laguna Ojo de Mar.

Closterium lezblermaú Kútzing ex Ralís var. lezbler-

na (Figs. 12-13).

Long. cell. 280 nm, lat. cell. 48 um, lat. ap. 3

pm.

Laguna Ojo de Mar.

Closterium moniliferum (Bory) Ehrenberg ex

Ralfs var. moniliferum (Figs. 14-15).

Long. cell. 200 ym, lat. cell. 30 um, lat. ap. 7

pm.

Laguna ca. Puerto Natales.

Clostervum parvulum Nágeli var. parvulum (Fig.

16).

Long. cell. 95-108 jm, lat. cell. 17,5-20 um,

lat. ap. 3 pm.

Laguna ca. Puerto Natales.

Closterium praelongum Brébisson var. brevius

(Nordstedt) W. Krieger (Figs. 17-18).

Long. cell. 440 ym, lat. cell. 20 um, lat. ap. 4

pm.

Laguna Lynch.

Closterrum pritchardianum Archer (Figs. 19-20).

Long. cell. 420-460 jm, lat. cell. 50-60 pm,

lat. ap. 9 pm.

Laguna Tres Puentes.

Closterim tortum Griffith (Fig. 21).

Long. cell. 80-160 jm, lat. cell. 8-11 um.

Lagos Toro y Porteño.

EUASTRUM Ehrenberg

Euastrum dubium Nágeli var. dubium (Fig. 22).

Long. cell. 25-30 um, lat. cell. 18-20 yum, lat.

isth. 5-8 um.

Laguna ca. Puerto Natales y Lago Pehoe.

COSMARIUM Corda

Cosmarium bioculatum Brébisson var. bioculatum

(Fig. 23).

Long. cell. 18-20 um, lat. cell. 10-15 qm, lat.

isth. 4-6 um.

Laguna ca. Puerto Natales.

Cosmartum bireme Nordstedt var. huzela Fórster

(Figs. 28-30).

Long. cell. 17-20 nm, lat. cell. 17-20 um, lat.

isth. 7-8 um.

Laguna ca. Puerto Natales y Lago Pehoe.

Cosmartum blytti Wille var. blytta (Figs. 31-32).

Long. cell. 17-18 nm, lat. cell. 15-17 um, lat.

isth. 5 pm.

208

THEODULOZ Y PARRA

Laguna Ojo de Mar.

Cosmarium contractum Kirchner var. ellipso:-

deum (Elfving) W. et G.S. West (Figs. 33-34).

Long. cell. 30-32,5 um, lat. cell. 25-27 um,

lat. isth. 7-10 qm.

Lagunas ca. Puerto Natales, Lagos Pehoe y

Toro.

Cosmartum depressum (Nágeli) Lundell var. cir-

culare Krieger et Gerloff (Figs. 35-36).

Long. cell. 23-32,5 jm, lat. cell. 20-27,5

pum, lat. isth. 8-10 um.

Laguna ca. Puerto Natales, Lagos Pehoe y

Toro.

Cosmartum formosulum Hoff. var. formosulum

(Eig:37):

Long. cell 45-50 pum, lat. cell. 35-37 yum, lat.

isth. 10-12,5 pum.

Laguna Ojo de Mar.

Cosmartum laeve Rabenhorst var. laeve (Figs.

38-40).

Long. cell. 27-32 um, lat. cell. 18-20 qm, lat.

isth. 7-8 pm.

Lagunas Ojo de Mar y ca. Puerto Natales,

Lago Pehoe.

Cosmarium laeve var. octangulare (Wille) W. et

G.S. West (Fig. 41).

Long. cell. 17,5-20 ym, lat. cell. 15-17 qm,

lat. isth. 7-9 qm.

Lagunas Tres Puentes y ca. Puerto Natales,

Lago Toro.

Cosmarium margantiferum Meneghini (Fig. 42).

Long. cell. 40 jm, lat. cell. 38-40 jm, lat.

isth. 12-14 ym.

Laguna ca. Puerto Natales.

Cosmartum montrealense Croasdale (Figs. 24-

211):

Long. cell. 20-22,5 pum, lat. cell. 22-22,5

pm, 7-8 um.

Laguna Ojo de Mar.

Cosmanum obtusatum Schmidle var. obtusatum

(Fig. 53).

Long. cell. 45 um, lat. cell. 39 um, lat. isth.

15 um.

Lago Sarmiento.

Cosmartum phaseolus Brébisson var. phaseolus

(Fig. 43).

Long. cell. 27,5-30 um, lat. cell. 23-25 um,

lat. isth. 10-12,5 qm.

Laguna ca. Puerto Natales y Figueroa, La-

gos Sarmiento y Pehoe.

Cosmartum polygonum (Nágeli) Archer var. de-

pressum Messikommer (Figs. 44-45).

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

Long. cell. 12-14 pm, lat. cell. 13-15 pum, lat.

isth. 3-4 pm.

Laguna Ojo de Mar.

Cosmarium simpliciforme (Fritsch) Krieger et

Gerlotf (Fig. 46).

Long. cell. 47 um, lat. cell. 25 um, lat. isth. 8

pm.

Lago Toro.

Cosmarium subspeciosum Nordstedt var. validius

Nordstedt (Fig. 47).

Long. cell. 56-70 jm, lat. cell. 48-53 um, lat.

isth. 15-22,5 pm.

Laguna ca. Puerto Natales y Lago Pehoe.

Cosmarium tenue Archer var. tenue (Figs. 48-

50).

Long. cell. 16-21 um, lat. cell. 15-20 yum, lat.

isth. 5-7 pm.

Laguna Ojo de Mar, Lago Nordenskjóld.

Cosmanium tetraophtalmum Brébisson (Fig. 51).

Long. cell. 95 ym, lat. cell. 65 qm, lat. isth.

20 um.

Lago Toro.

Cosmartum venustum (Brébisson) Archer var.

minus (Wille) Krieger et Gerloff (Fig. 52).

Long. cell. 25 um, lat. cell. 20 um, lat. isth. 7

pm.

Lago Pehoe.

STAURASTRUM Meyen

Staurastrum arachne Ralfs var. curvatum W. et

G.S. West (Figs. 79-82).

Long. cell. 27-35 pm, lat. s. proc. 20-22,5

pum, lat. c. proc. 70-72,5 pm, lat. isth. 7-8

um.

Lagos Sarmiento, Pehoe, Nordenskjóld,

Porteño y Toro.

Staurastrum arcuatum Nordstedt (Figs. 63-65).

Long. cell. 20-22 jm, lat. c. proc. 32,5-34

pum, lat. isth. 7-10 pm.

Lagunas Ojo de Mar y Puerto Natales.

Staurastrum borgeanum Schmidle (Figs. 68-69).

Long. cell. 37,5-40 pm, lat. c. proc. 45-47,5

pm, lat. isth. 12,5 pum.

Laguna Lynch.

Staurastrum denticulatum (Nágeli) Archer (Figs.

57-58).

Long. cell. 35-37,5 pum, lat. cell. 32,5-35

pm, lat. isth. 12,5-14 pm.

Laguna ca. Puerto Natales.

Staurastrum furcigerum Brébisson (Fig. 87).

Long. cell. 75 um, lat. cell. 67,5 um, lat. isth.

17 pm.

THEODULOZ Y PARRA

Laguna Lynch y Laguna ca. Puerto Natales.

Staurastrum gracile Ralts (Figs. 76-78).

Long. cell. 22,5-25 um, lat. c. proc. 37-40

pm, lat. isth. 8-10 yum.

Lagunas Tres Puentes ca. Puerto Natales y

Figueroa, Lagos Sarmiento, Pehoe y Toro.

Staurastrum longipes (Nordstedt) Teiling var.

evolutum W. et G.S. West (Figs. 70-71).

Long. cell. 12,5 qm, lat. c. proc. 35 yum, lat.

isth. 7 um.

Laguna Ojo de Mar.

Staurastrum manfeldtn Delpin var. flummnense

Schumacher (Fig. 74).

Long. cell. 45 pm, lat. s. proc. 27,5 um, lat.

c. proc. 87,5 pm, lat. isth. 10 ¡um.

Laguna ca. Puerto Natales.

Staurastrum pilosum (Nágeli) Archer (Fig. 56).

Long. cell. 50 pm, lat. cell. 48 yum, lat. isth.

12,5-13 pm.

Laguna Lynch.

Staurastrum pseudosebald: Wille (Fig. 75).

Long. cell. 49-54 ym, lat. c. proc. 58-60 jum,

lat. s. proc. 20-25 jm, lat. isth. 10-11 pm.

Laguna Figueroa y Lago Toro.

Staurastrum punctulatum Brébisson var. punctu-

latum (Figs. 54-55).

Long. cell. 30-40 pum, lat. cell. 30-40 um, lat.

isth. 10-12,5 pm.

Laguna Figueroa, Laguna Lynch, Lagos

Sarmiento y Pehoe.

Staurastrum rotula Nordstedt var. smith

(Smith) Thomasson (Figs. 83-84).

Long. cell. 37-38 jm, lat. proc. 65-70 um,

lat. isth. 10-11 pm.

Vista polar 8 radiado.

Lago Porteño.

Staurastrum sebaldi Reimsch var. ornatum

Nordstedt fma. planctonica Teiling (Figs.

72-73).

Long. cell. 40-60 um, lat. c. proc. 45-80 pm,

lat. s. proc. 30-40 pum, lat. isth. 8-10 um.

Lagunas Lynch y Figueroa, Lagos Toro y

Porteño.

Staurastrum tetracerum Ralfs (Figs. 66-67).

Long. s. proc. 10-12 um, lat. s. proc. 10-12

pum, lat. c. proc. 15-17 um, lat. isth. 6-7 um.

Lagunas Lynch y Figueroa, Lagos Sarmien-

to, Porteño y Toro.

Staurastrum tohopekaligense Wolle (Figs. 85-86).

Long. cell. 30 nm, lat. s. proc. 22,5 um, lat.

c. proc. 49 jm, lat. isth. 13 pm.

Laguna ca. Puerto Natales.

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

Staurastrum sp. 1 (Figs. 59-62).

Long. cell. 40 jm, lat. cell. 32-43 pm, lat.

isth. 12,5-18 pm.

Lagos Pehoe, Nordenskjóld, Porteño y

Toro.

STAURODESMUS Teiling

Staurodesmus brevispina (Brébisson) Croasdale

(Figs. 96-97).

Long. cell. 25-45 pm, lat. cell. 24-40 qm, lat.

isth. 7,5-12 um.

Laguna ca. Paierto Natales, Lagos Nor-

denskjóld, Porteño y Toro.

Staurodesmus cuspidatus (Brébisson) Teiling

var. divergens (Nordstedt) Teiling (Fig. 95).

Long. cell. 17-25 pm, lat. cell. 17-25 um, lat.

isth. 6-8 yum.

Laguna ca. Puerto Natales.

Staurodesmus dejectus (Brébisson) Teiling var.

dejectus (Figs. 88-94).

Long. cell. 27,5-35 ¡um, lat. cell. 29-42,5

pm, lat. isth. 8-10 pm.

Laguna Ojo de Mar, Lagunas ca. Puerto

Natales y Figueroa, Lagos Toro y Porteño.

Staurodesmus indentatus (West) Teiling (Figs.

102-106).

Long. cell. 28-30 pm, lat. s. proc. 20-22 um,

long. proc. 12-15 qm, lat. isth. 8-10 um.

Laguna ca. Puerto Natales, Lago Sarmiento

y Toro.

Staurodesmus patens (Nordstedt) Croasdale var.

patens (Fig. 98-101).

THEODULOZ y PARRA

Long. cell. 32-40 ym, lat. cell. 32-40 um, lat.

isth. 8-12 pm.

Lagunas ca. Puerto Natales, Lagos Sar-

miento y Toro.

Staurodesmus sellatus Teiling (Figs. 107-111).

Long. cell. 20-32,5 um, lat. s. proc. 17,5-25

um, long. proc. 15-17 ym, lat. isth. 10 um.

Laguna Ojo de Mar, Lagos Pehoe, Porteño

y Toro.

SPHAEROZOSMA Corda

Sphaerozosma auberttanum West var. archer

(Gutwinski) W. et G.S. West (Fig. 112).

Long. cell. 17,5 um, lat. cell. 20 um, lat. isth.

7-8 um.

Laguna ca. Puerto Natales.

HYALOTHECA Ehrenberg 1840

Hyalotheca dissiliens (Smith) Brébisson (Fig.

5):

Long. cell. 15-17 pm, lat. cell. 27,5-30 pm.

Lagunas Ojo de Mar, Lynch, Tres Puentes,

ca. Puerto Natales y Figueroa, Lagos Sar-

miento y Porteño.

TEILINGIA Bourrelly

Teilingia granulata (Roy et Bisset) Bourrelly

(Fig. 114).

Long. cell. 9-10 um, lat. cell. 8-9 pum, lat.

isth. 7,5 pm.

Laguna ca. Puerto Natales y Lago Pehoe.

CONCLUSIONES

En las Tablas V y VI se presenta una sinopsis

de la flora desmidiológica de la región austral

de Chile (48%15'S y 54*38'S). Incluyendo el

presente trabajo se conocen 174 taxa que se

agrupan en 17 géneros. Se observa una noto-

ria dominancia en el número de taxa de los

géneros Cosmarium (64) Staurastrum (33) y Clos-

ternum (26). Luego están los géneros Staurodes-

mus y Euastrum con un número de especies

bastante menor, 18 y 8, respectivamente. Los

restantes géneros están pobremente repre-

sentados.

De las 56 especies determinadas en el pre-

sente trabajo, 16 habían sido ya citadas ante-

210

riormente y 40 corresponden a nuevas citas

para la región.

Los siguientes taxa no han sido encontra-

dos en otras regiones del país:

Clostervum acerosum (Schrank) Ehrenberg

var. borgez W. Krieger

Closternum idiosporum W. et G.S. West var.

idiosporum

Closterrum incurvum Brébisson var. in-

curvum

Clostervum praelongum Brébisson var. brevius

(Nordstedt) W. Krieger

Clostervum tortum Griffith

Cosmarium montrealense Croasdale.

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

THEODULOZ Y PARRA

Tabla V

SINOPSIS DE LA FLORA DESMIDIOLOGICA

EN LA REGION AUSTRAL DE CHILE

(48%15'S - 54738'S)

Theoduloz £ Parra

Borge, 1901, 1906

Total

N?* de taxa

Nuevas citas totales conocidos

para la región para la región

Asprey el al., 1964

Géneros Thomasson, 1955,

1957

Arthrodesmus

Closterium 20

Cosmartum 51

Cylindrocystas l

Euastrum 7

Gonatozygon —

Hyalotheca l

Micrasterias l

Pentum 5

Pleurotaenium 2

Sphaerozosma 1

Spirotaema 2

Staurastrum 9)

Staurodesmus 14

Teilingra 1

Tetmemorus 4

Xanthidium 3

17 géneros/N” taxa

Cosmartum polygonum (Nágeli) Archer var.

depressum Messikommer

Cosmarium tenue Archer var. tenue

Staurastrum borgeanum Schmidle

En Laguna Ojo de Mar, Laguna Lynch,

Laguna cerca Puerto Natales y en el Lago Nor-

denskjóld, las especies dominantes correspon-

dieron a desmidiaceas. Así en Laguna Ojo de

Mar dominaba Cosmarium tenue var. tenue,

mientras que Staurastrum arcuatum y Staurodes-

mus dejectus eran subdominantes; en Laguna

Lynch dominaba ampliamente Hyalotheca dis-

siliens y abundante estaba Staurastrum sebaldi

var. ornatum fma. planctonica; en la laguna cer-

ca de Puerto Natales dominaba Cosmarium con-

tractum var. ellipsoideum, estando como subdo-

minantes Cosmarium phaseolus var. phaseolus y

Staurodesmus dejectus; por otra parte en el lago

Nordenskjóld dominaba nuevamente Cosma-

rium tenue var. tenue pero teniendo como sub-

dominantes a Staurastrum arachne var. curva-

00 mn

211

40

tum, Staurodesmus sellatus y Staurodesmus brevis-

pina.

En los restantes cuerpos de agua estudia-

dos, las especies dominantes no eran desmi-

diaceas, pero éstas aparecían como subdomi-

nantes. En Laguna Tres Puentes, Cosmarium

laeve var. octangulare estaba abundante; en La-

guna Figueroa abundaba Staurastrum arachne

var. curvatum; en el Lago Pehoe subdominan-

do encontramos a Cosmarium contractum var.

ellipsoideum; en el Lago Porteño subdominaba

Staurastrum tetracerum y en el Lago Toro lo

hacían St. arachne var. curvatum y Staurodesmus

sellatus.

Consideramos todavía como parcial la in-

formación ficológica para el área estudiada,

de ahí que resulte prematuro hacer compara-

ciones con otras regiones del país. Se deberá

entonces proseguir con las investigaciones,

con el objeto de ir incrementando el conoci-

miento taxonómico y ecológico de las algas de

agua dulce de Chile.

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

THEODULOZ y PARRA

Tabla VI

LISTA DE TAXA CONOCIDOS PARA LA REGION

AUSTRAL DE CHILE

(48915'S y 54"38'S)

Arthrodesmus incus (Bréb.) Hassall: Borge, 1906.

Closterium acerosum (Schrank) Ehr.: Borge, 1901;

Theoduloz £: Parra.

Closterium acerosum var. borgei W. Krieger: Theo-

duloz 8: Parra.

Closterium aciculare Y. West var. aciculare: Thomas-

son, 1955; Theoduloz-Parra.

Clostervum dianae Ehr. ex Ralfs: Borge, 1906.

Clostertum ehrenbergú Menegh ex Ralfs: Borge,

1901.

Closterium excavatum Borge: Borge, 1901.

Clostertum gracile Bréb. ex Ralfs.: Borge, 1901,

1906.

Closterium idiosporum W.etG.S. West var. idiosporum:

Theoduloz £ Parra.

Closterium incuruum Bréb. var. incurvuum: Theo-

duloz-Parra.

Closterium jenneri Ralfs: Borge, 1906.

Closterium kuetzangú Bréb. var. kuetzingu: Borge

1901; Theoduloz-Parra.

Closterrum lanceolatum Kútz. ex Ralfs: Borge, 1901.

Closterium leibleima Kútz. ex Ralfs: Borge, 1901;

Thomasson, 1955; Theoduloz-Parra.

Closterrum lunula (Muúll.) Nitzsch. ex Ralfs: Borge,

1901.

Closterrum magellanicum Borge: Borge, 1906.

Closterium moniliferum (Bory) Ehr. ex Ralfs var. mo-

mbferum: Borge, 1901; Theoduloz-Parra.

Closterium parvulum Nág. var. parvulum: Borge,

1901, 1906; Theoduloz-Parra.

Closterium praelongum Bréb.: Borge, 1901.

Closterrum praelongum var. brevius (Nordst.) W.

Krieg.: Theoduloz-Parra.

Closterium pritchardianum Arch.: Theoduloz-Parra.

Clostervum pronum Bréb.: Borge, 1901.

Closterium striolatum Ehr. ex Ralfs: Borge, 1906.

Closterium tortum Griff.: Theoduloz-Parra.

Closterrum tumidulum Gay: Borge, 1901.

Closterrum tumidum Johns: Borge, 1901.

Clostervum venus Kútz ex Ralfs: Borge, 1901.

Cosmarium abbreviatum Racib. var. planctonicum W. et

G.S. West: Thomasson, 1955.

Cosmarium amoenum (Bréb.) Ralfs var. mediolaeve

Nordst.: Borge, 1906.

Cosmarium bioculatum Bréb. ex Ralfs var. bioculatum:

Theoduloz-Parra.

Cosmarium bireme Nordst. var. huzelii Fórster:

Theoduloz-Parra.

Cosmarium blyttú Wille var. blytti:: Theoduloz-Parra.

Cosmarium botrytis Menegh. ex Ralfs: Borge, 1901;

Thomasson, 1955.

Cosmarium botrytis var. subtumidum Witt.: Borge,

1901.

212

Cosmartum calcareum Wittr.: Borge, 1901.

Cosmartum concinnum (Rab.) Reinsch: Borge, 1901.

Cosmarium contractum Kirch.: Borge, 1901.

Cosmarium contractum var. ellipsoudeum (Elfv.) W. et

G.S. West: Thomasson, 1955; Theoduloz-Parra.

Cosmartum crenatum Ralfs: Borge, 1901.

Cosmartum cucumis Corda ex Ralfs: Borge, 1901,

1906.

Cosmarium depressum (Nágeli) Lundell var. circulare

Krieget et Gerloff: Theoduloz-Parra.

Cosmanuum dusenú Borge: Borge, 1906.

Cosmartum dusenú var. triquetrum Borge: Borge,

1906.

Cosmarium exiguum Archer: Borge, 1901.

Cosmarium formosulum Hoff. var. formosulum: Theo-

duloz-Parra.

Cosmarium excentricum Borge: Borge, 1901.

Cosmarium globosum Buln.: Borge, 1906.

Cosmarium granatum Bréb. ex Ralfs: Borge, 1901,

1906.

Cosmarium hammeri Reinsch: Borge, 1901.

Cosmarium humile (Gay) Nordst. var. striatum (Boldt)

Schm.: Borge, 1901.

Cosmartum humile var. substriatum (Nordst.) Schm.:

Borge, 1901.

Cosmartum incisum Racib. fma. major Borge: Borge,

1901.

Cosmarim laeve Rab. var. laeve: Borge, 1901; Theo-

duloz-Parra.

Cosmarium laeve var. octangulare (Wille) W. et G.S.

West: Theoduloz-Parra.

Cosmarium latum Bréb.: Borge, 1901.

Cosmarium letodermum (Gay) Hansg.: Borge, 1901.

Cosmarnum magnificum Nordst. var. patagonicum

Borge: Borge, 1901.

Cosmarium margaritiferum Menegh.: Theoduloz-

Parra.

Cosmartum meneghina Bréb. ex Ralfs: Borge, 1901.

Cosmarium moniliforme (Turp.) ex Ralfs: Thomas-

son, 1955.

Cosmartum moniliforme var. panduriforme Heimerl.:

Thomasson, 1955.

Cosmarium montanum Schm. var. pseudoregnest

(West) Borge: Borge, 1901.

Cosmarium montrealense Croasdale: Theoduloz-

Parra.

Cosmartum obtusatum Schmidle var. obtusatum: Theo-

duloz-Parra.

Cosmarium pachydermum Lundell: Borge, 1901,

1906.

Cosmarium parallelum Borge: Borge, 1901.

Cosmarium parvulum Bréb.: Borge, 1906.

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

Cosmarium phaseolus Bréb. ex Ralfs var. phaseolus:

Borge, 1906, Theoduloz-Parra.

Cosmarium polygonum Nág. var. depressum Messik.:

Theoduloz-Parra.

Cosmarium pseudanax Borge: Borge, 1906.

Cosmarium pseudobotrytis (Gay) Squin. var. majus Bor-

ge: Borge, 1901.

Cosmarium pseudokirchner: Borge: Borge, 1901.

Cosmarium punctulatum Bréb.: Borge, 1901.

Cosmarium punctulatum var. subpunctulatum

(Nordst.) Borge: Borge, 1901.

Cosmarium pygmaeum Archer: Borge, 1906.

Cosmarium pyramidatum Bréb. fma. maximum Borge:

Borge, 1901.

Cosmarium quadratum Ralfs fma.: Borge, 1901.

Cosmarium quadrifarrum Lundell fma. major Borge:

Borge, 1906.

Cosmarium regnellii Wille: Borge, 1906.

Cosmarium simpliciforme (Fritsch) Krieger et Gerloff:

Theoduloz-Parra.

Cosmarium speciosum Lundell var. rectangulare Bor-

ge: Borge, 1901.

Cosmarium subarctoum Lagerh.: Asprey et al., 1964.

Cosmarium subcrenatum Hantz: Borge, 1901.

Cosmarium subspeciosum Nordst. var. validvus Nordst:

Borge, 1901; Theoduloz-Parra.

Cosmarium tenue Archer var. tenue: Theoduloz-

Parra.

Cosmarium tetraophtalmum (Krieger) Ralfs: Theo-

duloz-Parra.

Cosmarium tetraophtalmum var. patagonicum Borge:

Borge, 1901.

Cosmarium turgidum Bréb. fma. minor (Reinsch)

Schm.: Borge, 1901.

Cosmarium tinctum Ralfs: Borge, 1901.

Cosmarium venustum (Bréb.) Archer var. minus (Wi-

lle) Krieger et Gerloff: Theoduloz-Parra.

Cosmarium wittrockú Lundell var. schmidle: Borge:

Borge, 1901.

Cylindrocystis brebissoni Menegh.: Borge, 1906.

Cosmartum brebissoni Menegh.: Borge, 1906.

Euastrum binale (Turp.) Ehr. ex Ralfs: Borge, 1901,

1906.

Euastrum cuneatum Jenner ex Ralfs var. robustum

Borge: Borge, 1906.

Euastrum denticulatum (Kirch.) Gay: Borge, 1906.

Euastrum dubium Nág.: Theoduloz-Parra.

Euastrum dusenú Borge var. triquetrum Borge: Bor-

ge, 1906.

Euastrum inerme (Ralfs) Lundell. var. glabrum Bor-

ge: Borge, 1906.

Euastrum pectinatum Bréb. ex Ralfs var. prorrectum

Borge: Borge, 1901.

Euastrum subamoenum Schm.: Borge, 1901.

Gonatozygon monotaenium De Bary: Theoduloz-

Parra.

213

THEODULOZ Y PARRA

Hyalotheca dissiliens (Sm.) Bréb. ex Ralfs: Thomas-

son, 1955; Theoduloz-Parra.

Hyalotheca mucosa (Mertens) Ehr. ex Ralfs: Borge,

1901.

Maicrasterias rotata (Grev.) Ralfs: Borge, 1906.

Penium closterioides Ralfs. fma. minor Schmidle: Bor-

ge, 1906.

Pentium libellula (Focke) Nordst.: Borge, 1906.

Penium magellanicum Borge: Borge, 1906.

Pentium navicula Bréb. fma.: Borge, 1906.

Pleurotaenium coronatum (Bréb. ex Ralfs) Rab.: Tho-

masson, 1955.

Pleurotaentum ehrenbergú (Bréb.) De Bary: Borge,

1901.

Sphaerozosma aubertanum West var. archeri (Gutw.)

W. et G.S. West: Theoduloz-Parra.

Sphaerozosma granulatum Roy et Biss.: Borge, 1901;

Thomasson, 1955 (Teilingra).

Sphaerozosma vertebratum (Bréb.) Ralfs: Borge, 1901.

Spirotaenia minuta Thuret: Borge, 1906.

Spirotaenia obscura Ralfs: Borge, 1906.

Staurastrum aculeatum (Ehr.) Menegh. ex Ralfs: Bor-

ge, 1906.

Staurastrum arachne Ralís var. curvatum W. et GS.

West: Theoduloz-Parra.

Staurastrum arcuatum Nordst.: Theoduloz-Parra.

Staurastrum borgeanum Schmidle: Theoduloz-Parra.

Staurastrum brebissonú Archer: Borge, 1906.

Staurastrum brevispinum Bréb.: Borge, 1901 (Stauro-

desmus).

Staurastrum cingulum (W. et G.S. West) Smith var.

ornatum lrenée-Marie forma Thomasson, 1955.

Staurastrum corpulentum Thomasson: Asprey et al.,

1964; Thomasson, 1955.

Staurastrum cuspidatum var. divergens Nordst.: Bor-

ge, 1901 (Staurodesmus).

Staurastrum dejectum Bréb. ex Ralfs var. patens

Nordst.: Borge, 1901 (Staurodesmus).

Staurastrum denticulatum (Nág.) Archer: Theoduloz-

Parra.

Staurastrum dickiei Ralfs: Borge, 1901 (Stauro-

desmus).

Staurastrum elongatum Bark: Asprey el al., 1964.

Staurastrum furcigerum Bréb. ex Archer: Borge,

1901; Thomasson, 1955; Theoduloz-Parra.

Staurastrum gracile Ralfs: Theoduloz-Parra.

Staurastrum longipes (Nordst.) Teiling var. evolutum

(W. et G.S. West) Thom.: Theoduloz-Parra.

Staurastrum manfeldtii Delpin var. fluminense Schu-

macher: Theoduloz-Parra.

Staurastrum megacanthum Lundell.: Borge, 1901

(Staurodesmus).

Staurastrum muticum Bréb. ex Ralfs: Borge, 1901.

Staurastrum orbiculare Ralfs: Borge, 1901.

Staurastrum oxyacanthum Archer var. patagonicum

Borge: Borge, 1901.

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

Staurastrum paradoxum Meyen ex Ralfs: Borge,

1901; Thomasson, 1955.

Staurastrum paradoxum var. parvum West: Thomas-

son, 1955.

Staurastrum pilosum (Naeg.) Archer: Theoduloz-

Parra.

Staurastrum planctonicum Teiling var. ornatum

(Grónbl.) Teiling: Asprey et al., 1964.

Staurastrum polymorphum Bréb. ex Ralfs: Borge,

1901.

Staurastrum pseudosebald: Wille: Theoduloz-Parra.

Staurastrum punctulatum Bréb. ex Ralfs fma.: Borge,

1901.

Staurastrum punctulatum var. punctulatum: Theo-

duloz-Parra.

Staurastrum rotula Nordst. var smitha (Smith)

Thom.: Theoduloz-Parra.

Staurastrum sebaldi Reinsch: Asprey et al., 1964.

Staurastrum sebaldi Reinsch var. brasiliense Boerg.:

Thomasson, 1955.

Staurastrum sebaldi var. ornatum Nordst. fma. planc-

tonicum Teiling: Theoduloz-Parra.

Staurastrum striolatum (Naeg.) Archer: Borge, 1906.

Staurastrum striolatum fma. minor Borge: Borge,

1901.

Staurastrum tetracerum Ralfs.: Borge, 1901; Theo-

duloz-Parra.

Staurastrum tohopekaligense Wolle: Theoduloz-

Parra.

Staurastrum tricorne Menegh. ex Ralfs: Borge, 1901.

Staurodesmus brevispina (Bréb.) Croads.: Theoduloz-

Parra. Borge, 1901 (Staurastrum).

Staurodesmus convergens (Ehr. ex Ralfs) Teiling var.

maximus fac. dickier (Ralfs) Thomasson: Thomas-

son, 1955.

Staurodesmus curvatus (Turner) Thomasson: Tho-

masson, 1955.

Staurodesmus cuspidatus (Bréb. ex Ralfs) Teiling. var.

divergens (Nordst.) Teiling: Borge, 1901; Theo-

duloz-Parra.

THEODULOZ y PARRA

Staurodesmus cuspidatus var. maximus Kaiser fac. tri-

cuspidatus (Bréb.) Teiling: Thomasson, 1955,

1957.

Staurodesmus dejectus (Bréb.) Teiling var. dejectus:

Theoduloz-Parra.

Staurodesmus dejectus (Bréb.) Teiling var. patens

Nordst.: Borge, 1901.

Staurodesmus dickiei Ralfs: Borge, 1901.

Staurodesmus indentatus (W. West) Teiling: Theo-

duloz-Parra.

Staurodesmus joshuae Gutw. fac. trispinosus: Tho-

masson, 1955.

Staurodesmus joshuae var. longispinus Thomasson:

Thomasson, 1955.

Staurodesmus megacanthus (Lund.) Thunm.: Borge,

1901; Thomasson, 1955.

Staurodesmus patens (Nordst.) Croasdale var. patens:

Theoduloz-Parra.

Staurodesmus sellatus Teiling: Theoduloz-Parra.

Staurodesmus sellatus fac. brevispina Thomasson:

Thomasson, 1955, 1957.

Staurodesmus triangularis (Lagehr.) Teiling fac. janus

Teiling: Thomasson, 1955, 1957.

Staurodesmus triangularis fac. stroema Teiling: Tho-

masson, 1955, 1957.

Staurodesmus triangularis var. subparallelus (Smith)

Teiling: Thomasson, 1955.

Teilingía granulata (Roy et Biss.) Bourrelly: Borge,

1901; Theoduloz-Parra (Sphaerozosma).

Tetmemorus brebissoni (Menegh.) Ralfs: Borge,

1906.

Tetmemorus brebissont var. attenuatus Nordst.: Borge,

1906.

Tetmemorus granulatus (Bréb.) Ralfs: Borge, 1906.

Tetmemorus laevis (Kútz.) Ralfs: Borge, 1906.

Xanthidium dilatatum Nordst.: Borge, 1906.

Xanthidvum smithu Archer: Borge, 1906.

Xanthidium smith var. variabile Nordst.: Borge,

1906.

BIBLIOGRAFIA

AsPREY, G., Benson-Evans, K. and F. FurEr

(1964). A contribution to the study of South

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PARRa, O.O. y M. GonzÁLez (1977). Desmidiaceas

de Chile 111. Desmidiaceas de la Isla de Chiloé.

215

Gayana Bot. 34:1-103, 235 figs.

THOMASSON, K. (1955). Studies on South American

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THOMASSON, K. (1957). Studies on South American

Freshwater Plankton. I. Notes on the Planckton

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UTERMÓHL, H. (1958). Zur Vervollkomnung der

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Int. Limnol. 9:1-38.

THEODULOZ y PARRA

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984

[9 0099

00

===—T0 00

Fic. 1. Gonatozygon monotaentum var. monotaentum. FIG. 2. Closterium acerosum var. acerosum. F1Gs. 3, 4. Closterium acerosum

var. borgei. Fics. 5, 6. Closterium aciculare var. aciculare. F1Gs. 7, 8. Closterium idiosporum var. idrosporum. FIG. 9. Closterium

incurvum var. incurvum. Fics. 10, 11. Closterium kuetzingú var. kuetanga. Fics. 12, 13. Closternum leibleinú var. leibleimá. Fics.

14, 15. Clostenum moniliferum var. moniliferum.

216

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ y PARRA

Fic. 16. Closterrum parvulum var. parvulum. Fics. 17, 18. Clostenum praelongum var. brevius. Fics. 19, 20. Closterium -

pritchardicnum var. pritchardianum. FiG. 21. Clostenum tortum. Fic. 22. Euastrum dubium var. dubium. FiG. 23. Cosmarium

bioculatum var. bioculatum. Fics. 24-27. Cosmarium montrealense. Fics. 28-30. Cosmarium bireme var. huzelíi. Fics. 31, 32.

Cosmantum blytta var. blyttaz.

217

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ y PARRA

Fics. 33, 34. Cosmarium contractum var. ellipsoideum. Fics. 35-36. Cosmartum depressum var. circulare. F1G. 37. Cosmarium

formosulum var. formosulum. Fics. 38-40. Cosmarium laeve var. laeve. Fiú. 41. Cosmarium laeve var. octangulare. FIG. 42.

Cosmarium margaritiferum. F1G. 43. Cosmarium phaseolus var. phaseolus. Fics. 44, 45. Cosmarium polygonum var. depressum. FIG.

46. Cosmarium simpliciforme. F1G. 47. Cosmarium subspeciosum var. validius. Fics. 48-50. Cosmarium tenue var. tenue. FIG. 51.

Cosmarium tetraophtalmun. F1G. 52. Cosmarium venustum var. minus. FG. 53. Cosmartum obtusatum var. obtusatum.

218

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ y PARRA

Fics. 54, 55. Staurastrum punctulatum. FiG. 56. Staurastrum pilosum. Fics. 57, 58. Staurastrum denticulatum. Fics. 59-62.

Staurastrum sp. Fics. 63-65. Staurastrum arcuatum. FiGs. 66, 67. Staurastrum tetracerum.

219

Gayana. Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ Y PARRA

1. Staurastrum longapes var. evolutum. Fiús. 72, 73. Staurastrum sebaldi var.

Fics. 68, 69. Staurastrum borgeanum. FiGs. IDAS)

pseudosebalda. Fics. 76-78.

ornatum fma. planctonica. F1G. 74. Staurastrum manfeldtn var. fluminense. F1G. 75. Staurastrum aft.

Staurastrum gracile.

220

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ y PARRA

Fics. 79-82. Staurastrum arachne var. curvatum. Fics. 83, 84. Staurastrum rotula. Fics. 85, 86. Staurastrum tohopekaligense.

FiG. 87. Staurastrum furcigerum.

221

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ y PARRA

3)

Fics. 88-94. Staurodesmus dejectus var. dejectus. FIG. 95. Staurodesmus cuspidatus var. divergens. FiGs. 96, 97. Staurodesmus

brevispina. Fics. 98-101. Staurodesmus patens var. patens.

222

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ Y PARRA

102

z 4

Fics. 102-106. Staurodesmus indentatus.

104

223

Gayana, Bot. 41(3-4): 201-224, 1984 THEODULOZ y PARRA

110 |

107

113 5 119

Fics. 107-111. Staurodesmus sellatus. F1G. 112. Sphaerozosma aubertianum var. archeri. FIG. 113. Hyalotheca dissiliens. F1G. 1 14.

Teilingia granulata.

224

COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS

Moore, David M., 1983

FLORA OF TIERRA DEL FUEGO.

Anthony Nelson, England. Missouri Botanical Gar-

den, USA ix + 396 pp., 284 figs., 8 láminas en

colores, 413 mapas de distribución, mapas del área

estudiada en las contratapas.

El interés del Dr. D.M. Moore por la flora del extre-

mo sur de América empezó en su primer viaje a

Chile y Argentina en 1960, y desde entonces ha

escrito más de 20 trabajos sobre flora y fitogeogra-

fía de estas regiones, entre los que resalta la Flora of

the Falkland Islands, publicada en 1968. Sus inves-

tigaciones a lo largo de más de 20 años han dado

como resultado la hermosa e importante obra “Flo-

ra of Tierra del Fuego”, un volumen de 30 x 22 cm,

empastado en tela e impreso en excelente papel. En

ella el autor presenta datos sobre la topografía y

geología de Tierra del Fuego, un exhaustivo y muy

documentado resumen cronológico de las coleccio-

nes efectuadas en el área desde la primera visita en

1960, un capítulo sobre la vegetación con una clasi-

ficación en formaciones y comunidades, y una dis-

cusión sobre las afinidades geográficas de la flora.

Este último capítulo es de gran importancia por el

cúmulo de información sobre estadística de la flora,

número de especies, distribución y afinidades con

otras floras, y número de especies introducidas.

La parte sistemática, que por supuesto ocupa la

mayor parte de la obra, abarca todas las plantas

vasculares, desde helechos a monocotiledóneas, y

empieza por presentar una lista sistemática de las

Pteridophyta y Spermatophyta, con sus clases, fa-

milias y géneros. A esto sigue una clave para las

familias. Los caracteres elegidos para la construc-

ción de la clave son claros y precisos y su uso no

debería presentar dificultades si es que se dispone

de materiales completos.

La parte siguiente es la flora propiamente tal,

con descripciones cortas pero que entregan las ca-

racterísticas necesarias para la identificación de fa-

milias, géneros y especies. En muchos casos se indi-

ca la literatura básica, especialmente monografías,

para familias y en mayor grado, géneros. Las espe-

cies van acompañadas de su cita bibliográfica com-

pleta y sinonimia. Las descripciones de las especies

incluyen también datos muy útiles, tales como épo-

ca de floración, distribución y tipo de hábitat. La

utilidad de la flora se ve realzada por mapas de

distribución para todas las especies nativas.

Los dibujos de las especies provienen de tres

fuentes: la gran mayoría pertenecen a la Sra. R.

Natalis P. Goodall, quien ha captado fielmente el

aspecto de las plantas, aunque en algunos contados

casos la finura de las líneas no ha sido apropiada

225

para la reproducción, lo que ha hecho que se pier-

dan algunos detalles. Otros dibujos (42), pertene-

cen al notable y desafortunado dibujante Sydney

Parkinson (ca. 1745-71; “Amiable, virtuous, skilful,

hardworking, a good journal-keeper and ardent

collector of miscellaneous knowledge”; J.C. Bea-

glehole, ed.: The Voyage of the Endeavour, p. 599.

1955). Los dibujos correspondientes a la Tierra del

Fuego fueron hechos a mediados de enero de 1769

y ahora tenemos la posibilidad de admirarlos repro-

ducidos en la obra del Dr. Moore. Ya en esa época la

flora de Tierra del Fuego llamó la atención a Banks:

“Of plants here are many species and those truly

the most extraordinary 1 can imagine,...” (The En-

deavour Journal of Joseph Banks, ed. J.C. Bea-

glehole, 1:225, 1962).

El resto de los dibujos provienen de la Flora

Patagónica, editada por M.N. Correa, algunos de

ellos inéditos.

La obra concluye con un glosario, referencias

bibliográficas, un capítulo sobre nombres indígenas

y uso de las plantas, una lista de nombres españoles

e ingleses de las plantas y el correspondiente nom-

bre científico, una lista de las abreviaturas usadas

para los nombres de los autores de las plantas, una

lista de las abreviaturas usadas para libros y revistas

citadas y, finalmente, un índice de nombres científi-

cos, incluyendo los sinónimos.

En resumen, una obra muy bien venida, que es

un importante aporte al conocimiento de la flora de

Chile y Argentina y que no debería faltar en las

bibliotecas de los centros de botánica de nuestro

país.

CLODOMIRO MARTICORENA

Departamento de Botánica

Universidad de Concepción

Rivera, Patricio, 1983.

A GUIDE FOR REFERENCES

AND DISTRIBUTION FOR THE CLASS

BACILLARIOPHYCEAE IN CHILE

BETWEEN 18%28'S AND 585.

Biblioteca Diatomológica Bd. 3, 386 pp. J. Cramer,

Vaduz.

En este volumen ha sido resumida toda la informa-

ción sobre referencias bibliográficas y distribución

de los taxa de la Clase Bacillariophyceae que han

sido citados para Chile hasta el año 1982. En esta

obra, el Dr. Rivera ha alcanzado su objetivo de

poner al alcance de la comunidad ficológica infor-

mación sobre 1529 taxa, que están incluidos en 104

géneros de diatomeas marinas y dulceacuícolas. Pa-

ra cada uno de los taxa se cita la referencia original;

la distribución geográfica especificando el nombre

del autor y el año de la referencia, y en algunos

casos se incluye también la sinonimia correspon-

diente. Además el autor presenta un directorio con

las localidades geográficas y un índice de taxa Muy

valiosa es la lista de referencias bibliográficas que

corresponde a 404 títulos.

Es importante destacar el esfuerzo del Dr. Rive-

ra que ha hecho posible que esta valiosa y gran

cantidad de información esté a disposición de los

especialistas y estudiantes, quienes serán muy favo-

recidos y bien orientados por él cuando contri-

buyan con nuevos trabajos al conocimiento de las

diatomeas.

Oscar PARRA

Departamento de Botánica

Universidad de Concepción

226

a >

10.

11.

12.

13.

14.

lí.

16.

¡A

18.

19.

20.

21.

REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

La revista Gayana, dedicada a Claudio Gay, es el órgano oficial de la Editorial de la Universidad de

Concepción Chile, para la publicación de resultados de investigaciones originales en el área de las

Ciencias Naturales. Está compuesta de las series Botánica, Zoología y Miscelánea.

Las dos primeras aparecen en la forma de un volumen anual compuesto por cuatro números; Gayana

Miscelánea es aperiódica.

Gayana recibe trabajos realizados por académicos de la Universidad de Concepción y ocasionalmente

los de otros investigadores nacionales o extranjeros de indudable prestigio, elaborados según las

normas del presente reglamento. La recepción es permanente.

Gayana acepta trabajos escritos en idioma español o inglés. La publicación en otros idiomas deberá ser

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El manuscrito debe ser entregado en triplicado; una de las copias llevará las figuras originales.

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El manuscrito será enviado a pares para su revisión técnica.

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Los nombres científicos y las locuciones latinas serán las únicas que irán subrayadas en el texto. La

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Las citas en el texto deben incluir nombre del autor y año [Ejemplo: Smith, J.G. (1952)]. Si hay varios

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Cuando hay más de dos autores todos los nombres serán citados en la primera mención (Ej.: Smith, J.G.,

P.J. Jones and W.E. Williams (1981); las referencias posteriores serán: Smith et al. (1981)].

La bibliografía incluirá todas y sólo las referencias citadas en el texto, dispuestas por orden alfabético

del apellido del primer autor, sin número que la anteceda. La literatura botánica será citada según el

B-P-H (Botánico-Periodicum-Huntianum) y la zoológica según el Style Manual of Biological Journals.

La nomenclatura de los trabajos botánicos y zoológicos se regirá por sus respectivos códigos.

Las ilustraciones y tablas deben ser adecuadas para, una vez reducidas, ocupar un ancho de 66 mm (una

columna) ó 137 mm (dos columnas) y una longitud no superior a 215 mm incluido el espacio del texto

explicativo.

Los dibujos y tablas deben ser realizados con tinta china sobre papel diamante y deben llevar una escala

para facilitar la determinación del aumento.

Las figuras se numerarán en orden correlativo con números arábicos. Las tablas de igual modo con

números romanos. Cada tabla debe llevar un título descriptivo en la parte superior.

Las fotografías se considerarán figuras para su numeración. Serán en blanco y negro, brillantes, de

grano fino y buen contraste y deben ser acompañadas de una escala para la determinación del aumento.

En el reverso de las láminas originales se deberá indicar el nombre del autor, título del trabajo y número

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Adjunto al manuscrito se entregará en forma secuencial las explicaciones de cada una de las figuras.

El texto deberá contener: Título, título en inglés, nombre de los autores, dirección de los autores,

Resumen, Abstract, Key Words, Introducción, Materiales y Métodos, Resultados, Discusión y Conclu-

siones, Agradecimientos y Bibliografía.

El título debe ir todo escrito en letra mayúscula y expresar el contenido real del trabajo. Si incluye un

nombre genérico o específico se indicará el rango sistemático inmediatamente superior.

Si por alguna circunstancia especial el trabajo debe ser publicado en forma diferente a las disposiciones

anteriores, el autor deberá exponer su petición al Director antes de enviarlo.

227

GAYANA

BOTANICA VOLUMEN 41 1984

CONTENIDO / CONTENTS

NUMEROS 1 y 2, 30 de octubre

KALIN ARROYO, M.T., MARTICORENA, C. y C. VILLAGRAN. La flora de la Cordillera

de los Andes en el área de Laguna Grande y Laguna Chica, 111 Región, Chile ......

The flora of the Cordillera de los Andes in the area of Laguna Grande and Laguna Chica, HI

Región, Chale.

MARTICORENA, C. y M.T. KALIN ARROYO. El Género Bartsia L. (Scrophulariaceae) en

ANEP RE AA Is

The genus Bartsia L. (Scrophulariaceae) in Chale.

MATTHEI, O. El género Muhlenbergia Schreber (Poaceae) en Chile .......ooooooooomo..

The genus Muhlenbergia Schreber (Poaceae) in Chale.

KOCH, P. y P. RIVERA. Contribución al conocimiento de las diatomeas chilenas. III. El

género Chagtoceros¡Ehr. (Subgénero'Phaeoceros Grad) 3... o 2 0 + AR

Contribution to the diatom flora of Chile. III. The genus Chaetoceros Ehr. (Subgenus Phaeoceros

Gran).

PARRA, 0.0., GONZALEZ, H. and M. GONZALEZ. A comparison of epiphytic diatom

assemblages attached to filamentous algae in lotic freshwater habitats of Chile ......

MUÑOZ, M., ROMO, H. y K. ALVEAL. Efecto de la salinidad en el crecimiento de tetraspo-

rofitos de Gracilaria verrucosa (Hudson) Papenfuss (Rhodophyta, Gigartinales) .......

Effect of salimity on growth of tetrasporelings of Gracilaria verrucosa (Rhodophyta, Gigartinales).

ROMO, H., ALVEAL, K. y M. AVILA. El efecto de la poda en sobrevivencia, tamaño y

rendimiento de Macrocystis pyrifera (L.) Ag. (Lessoniaceae) de Isla Navarino, Chile ...

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Desmidiaceas del sistema de lagos de la Cordillera del Paine y alrededores ..........

Desmids (Saccodermae and Placodermae) of Chale. IV. Desmids of the lakes system of Cordillera del

Paine and proximity.

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EDITORIAL UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

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47

61

85

119

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BOTANICA VOLUMEN 42 : NUMEROS 1-— 1985

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SERGIO AVARIA

Universidad de Valparaíso

DANKO BRNCIC

Universidad de Chile, Santiago

EDUARDO BUSTOS

Universidad de Chile, Santiago

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JUAN CARLOS CASTILLA

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FERNANDO CERVIGON

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA:

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REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR:

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Universidad de Concepción

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Barros Arana 631, 3er piso, Concepción, Chile.

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Andrés O. Angulo

Franklin Carrasco

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Universidad de Buenos Aires, Argentina

HAROLDO TORO

Universidad Católica, Valparaíso

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BOTANICA VOLUMEN 42 NUMEROS 1-2 1985

CONTENIDO/CONTENTS

MARTICORENA, C. y M. QUEZADA. Catálogo de la flora vascular de

Chile

Catalog of the vascular flora of Chile

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de ellos”.

Claudio Gay, Hist. de Chile, 1:14 (1848).

Portada: Valdivia gayana Remy (Saxifragaceae), planta chilena

en peligro de extinción (C. Gay, Historia Física y Política de

Chile, Atlas, lám. 29. 1854).

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORIAL UNIVERSITARIA, S.A.

EN EL MES DE DICIEMBRE DE 1985,

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

PARA LA EDITORIAL DE LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

INDICE

COSINA A A A a A A 5

INE OUECIOnN ads a a O es 7

MEA CEMIS AI LA SL IO 9

ESOO TARONOMICO. 11

Lista de familias, número de géneros y número de especies .......... 97

AE A A A A A E 115

indice de autores y aDreviaturas'. 0. TE a 129

A O O IS 147

Reterencias bibliográficas ca MIENIAANIAS IIS 151

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

RESUMEN

Se presenta un catálogo de la flora vascular de Chile. Los nombres están divididos en cuatro

grupos: Pteridophyta, Gymnospermae, Dicotyledoneae y Monocotyledoneae. Dentro de cada

grupo los nombres están ordenados alfabéticamente por familias, géneros, especies y taxa infraes-

pecíficos. Se incluye además una lista de familias con el número de géneros y de especies en cada

género, un índice alfabético de géneros con indicación de la familia y grupo a que pertenecen, y

una lista de las abreviaturas, nombres completos y fecha de nacimiento y muerte (cuando disponi-

ble) de los autores de la taxa.

De acuerdo a este catálogo, la flora vascular de Chile, incluyendo las especies naturalizadas,

comprende 192 familias, 1.032 géneros y 5.215 especies. Se propone la nueva combinación Stipa

breuviseta (Hitchc.) Marticorena et Quezada.

ABSTRACT

A catalog of the vascular flora of Chile is presented. The names are divided in four groups:

Pteridophyta, Gymnospermae, Dicotyledoneae and Monocotyledoneae. Within each group the

names are arranged in alphabetical order by families, genera, species and infraspecific taxa. A list

of the families with the number of genera and of species in each genus, an alphabetic list of genera

with indication of the family and group to which they belong, and a list of the abbreviations, full

names and birth and death (when available) of the authors of the taxa are also included.

In accordance with this catalog, the vascular flora of Chile, including the naturalized species,

consist of 192 families, 1.032 genera and 5.215 species. The new combination Stipa breviseta

(Hitchc.) Marticorena et Quezada is proposed.

KEYWORDS: Checklist, Flora of Chile, Stipa, Vascular plants.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

INTRODUCCION

Por mucho tiempo en nuestro trabajo con plantas chilenas en el herbario o identificando materia-

les para otros colegas, habíamos sentido la necesidad de contar con una lista actualizada de

nombres científicos de las plantas vasculares de Chile, que nos permitiera poder escribir correcta-

mente estos nombres, especialmente en lo que se refiere a los nombres de los autores de las

especies, sin tener que recurrir a los diversos trabajos y con el consiguiente ahorro de tiempo. Esta

necesidad también nos había sido expresada en muchas ocasiones por investigadores que trabajan

en otras áreas de la botánica, tales como ecología, química de productos naturales, etc., los que

además deseaban tener una guía que les permitiera saber cuántas especies tiene un género, o el

número de géneros de una familia, o datos nomenclaturales, o simplemente cómo escribir

correctamente los nombres de las plantas.

En 1980 comenzamos a preparar el catálogo taxonómico que forma la parte principal de este

trabajo, primero revisando las floras de Chile y las revisiones de géneros presentes en el país. Una

vez realizado este primer índice se examinaron todos los trabajos disponibles donde se citan

plantas chilenas o introducidas, con el fin de determinar para cada nombre si era válido o

sinónimo. En muchos géneros las especies están bien conocidas y determinar su nombre correcto

no presentó mayores problemas, pero existe una gran cantidad de géneros que no han sido

revisados desde hace mucho tiempo y cuya nomenclatura es caótica. En este caso hemos tratado de

dar una lista de especies lo más correcta posible, sin olvidar que persisten muchos nombres que

podrán cambiar luego de una revisión, variando también el tamaño de los géneros.

La flora de Chile comprende, además de las plantas autóctonas, una cantidad apreciable de

plantas introducidas o que han llegado accidentalmente, naturalizadas, especialmente malezas. En

el Catálogo sus nombres están precedidos de un asterisco(*). En su mayoría son de origen europeo

y su nomenclatura está basada principalmente en la obra Flora Europaea (Tutin et al., 1964-80).

Nuestro propósito es entregar todos los nombres válidos para las plantas vasculares de Chile.

No se incluyen en este trabajo los sinónimos, que para la flora de Chile son innumerables y quedan

fuera del plan de un catálogo de este tipo. Tampoco es posible entregar una bibliografía de la gran

cantidad de trabajos consultados, que llega a varios miles y cuya recopilación será objeto de otra

investigación.

La taxonomía, en lo que se refiere a la nomenclatura, es una ciencia que está en constante

movimiento; los cambios en los nombres de los componentes de una flora son frecuentes y es por

eso que seguramente una vez aparecido este trabajo, ya se habrá producido una serie de ellos. Esto

lo hemos experimentado a lo largo del tiempo en que hemos estado preparándolo. En los últimos

meses, la aparición de varias revisiones taxonómicas o de floras, nos hicieron cambiar los nombres

y su número en varios géneros, y esto con seguridad se seguirá produciendo en el futuro.

A pesar de todas las revisiones que hemos hecho al manuscrito, seguramente se ha deslizado

algún error o alguna omisión. Esperamos que no sean muchos y deseamos que las personas que

usen este catálogo nos comuniquen las enmiendas y/o sus puntos de vista, con la seguridad de que

serán muy bien recibidas.

El trabajo está dividido en cuatro partes, además de unas notas finales y una breve bibliografía.

Estas son: el Catálogo Taxonómico, Lista de Familias y Géneros, Indice de Géneros e Indice de

Autores.

El Catálogo Taxonómico está organizado en el siguiente orden: Pteridophyta, Gymnospermae,

Angiospermae-Dicotyledoneae y Angiospermae-Monocotyledoneae. En cada sección las familias

están ordenadas alfabéticamente y dentro de ellas los géneros y las especies en orden alfabético, lo

cual permite la ubicación rápida de los taxa.

La Lista de Familias y Géneros tiene por objeto entregar la información estadística de la flora.

También está organizada en el mismo orden que el Catálogo Taxonómico hasta el nivel de género

A

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

y comprende los siguientes datos: número de géneros dentro de la familia y, entre paréntesis, el

número total de especies. A continuación se nombran los géneros y el número de especies de cada

uno. Al final de la lista se incluye un cuadro resumen del número de familias, géneros y especies de

Pteridophyta, Gymnospermae, Dicotyledoneae y Monocotyledoneae, con el porcentaje que cada

una representa en el total de la flora.

El Indice de Géneros tiene el propósito de permitir ubicar rápidamente la posición de un

determinado género, sea este Pteridophyta (1), Gymnospermae (2), Dicotyledoneae (3) o Mono-

cotyledoneae (4). El nombre de las familias se ha abreviado a seis letras, lo que las hace fácilmente

identificables. En algunos casos se han incluido sinónimos, con el nombre actual a continuación.

Esto representa sólo los sinónimos más usados y no pretende ser una sinonimia completa.

El Indice de Autores incluye los nombres de todas las personas que han descrito las plantas

mencionadas en el Catálogo Taxonómico y las abreviaturas que se han usado en cada caso. La gran

mayoría de ellas son las que se usan corrientemente en la literatura taxonómica, pero en algunos

casos hemos hecho algunas modificaciones para evitar ambigúedades. Los datos de los nombres

completos de los autores y las fechas se han obtenido de muchas fuentes, pero principalmente de

Stafleu (1967), Stafleu y Cowan (1976), Pritzel (1871-77), Tutin et al. (1964-80) y Meikle (1980).

Hemos creído necesario agregar al final algunas notas referentes a casos puntuales de algunos

taxa; en ningún caso se ha tratado de ser exhaustivo.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos a la Dra. Mary T. Kalin Arroyo, Facultad de Ciencias de la Unwersidad de Chile; al Dr. Oscar

R. Matthe: y al Prof. Roberto A. Rodríguez, Departamento de Botánica de la Unwersidad de Concepción, con

quienes hemos tenido la oportunidad de intercambiar ideas y recibir sus valiosos comentarios durante la

preparación de este trabajo; al Dr. David M. Moore, University of Reading, England y al Dr. Peter H. Raven,

director del Missouri Botanical Garden, St. Louis, USA por sus acertadas sugerencias, y a la Sra. Arlena

Henríquez, quien llevó a cabo la difícil tarea de mecanografrar el manuscrito.

Catálogo

Taxonómico

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

PEBRIDOPHYTA

ADIANTACEAE ASPIDIACEAE

Adiantum Ctenitis

* capillus-veneris L.

chilense Kaulf.

excisum Kunze

gertrudis Esp.

mochaenum Kunkel

pearcei Phil.

raddianum K. Presl

scabrum Kaulf.

sulphureum Kaulf.

thalictroides Willd. ex Schlecht. var. hirsutum

(Hook. et Grev.) de la Sota

Cheilanthes

inaequalifolia (Colla) Ching fma. inaequalifolia

fma. glabrior (C. Chr. et Skottsb.) Rodr.

spectabilis (Kaulf.) Kunkel var. spectabilis

var. philippiana (C. Chr.) Rodr.

Polystichum

andinum Phil.

brongniartianum Remy et Fée

chilense (Christ) Diels var. chilense

var. dusenii (C. Chr.) Looser

fuentesii Esp.

mohrioides (Bory) K. Presl var. elegans (Remy et

Fée) C. Chr.

glauca (Cav.) Mett.

myriophylla A.N. Desv.

pilosa Goldm.

multifidum (Mett.) Moore var. multifidum

nahuelhuapiense Diem

tetragonum Fée

pruinata Kaulf.

valdiviana Phil. Rumohra

adiantiformis (G. Forster) Ching

Cryptogramma berteriana (Colla) Rodr.

fumariifolia (Phil. ex Baker) Christ

Notholaena

arequipensis Maxon

aurea (Poir.) A.N. Desv.

chilensis (Remy et Fée) Sturm

mollis Kunze

ASPLENIACEAE

Asplenium

nivea (Poir.) A.N. Desv.

sulphurea (Cav.) J. Sm.

tomentosa (A.N. Desv.) A.N. Desyv.

Pellaea

myrtillifolia Mett. ex Kuhn

ternifolia (Cav.) Link var. ternifolia

adiantoides (L.) C. Chr. var. squamulosum C.

Chr. et Skottsb.

chondrophyllum Bert. ex Colla

dareoides A.N. Desv.

fragile K. Presl var. lomense Weath.

gilliesiz Hook.

macrosorum Bert. ex Colla

monanthes L.

obtusatum G. Forster var. obtusatum

Pteris var sphenoides (Kunze) C. Chr. et Skottsb.

| l

- berteroana Agardh stellatum Colla

Pityrogramma (Ver Trismeria)

chilensis A.N. Desyv.

semiadnata Phil.

Trismeria

trifoliata (L.) Fée ex Diels

trilobum Cav.

triphyllum K. Presl

Pleurosorus

papaverifolius (Kunze) Fée

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

ATHYRIACEAE

Cystopteris

diaphana (Bory) Blasdell

diaphana (Bory) Blasdell x fragilis (L.) Bernh.

fragilis (L.) Bernh. var. apiiformis (Gand.) C.

Chr.

Diplazium

fuenzalidae Esp.

Woodsia

montevidensis (Spreng.) Hieron.

AZOLLACEAE

Azolla

filiculoides Lam.

BLECHNACEAE

Blechnum

arcuatum Remy et Fée

asperum (Klotzsch) Sturm

blechnoides Keyserl.

chilense (Kaulf.) Mett. var. chilense

var. reedi Phil.

corralense Esp.

cycadifolium (Colla) Sturm

hastatum Kaulf.

longicauda C. Chr.

magellanicum (A.N. Desv.) Mett.

microphyllum (Goldm.) Morton

mochaenum Kunkel var. mochaenum

var. fernandezianum (Looser) de la Sota

penna-marina (Poir.) Kuhn

schottii (Colla) C. Chr.

Doodia

paschalis C. Chr. et Skottsb.

DAVALLIACEAE

Arthropteris

altescandens (Colla) J. Sm.

Davallia

solida (G. Forster) Sw.

DENNSTAEDTIACEAE

Dennstaedtia

glauca (Cav.) C. Chr. ex Looser

Histiopteris

incisa (Thunb.) J. Sm.

Hypolepis

rugosula (Labill.) J.E. Sm. var. poeppigii (Kunze)

C. Chr. et Skottsb.

Microlepia

strigosa (Thunb.) K. Presl

DICKSONIACEAE

Dicksonia

berteriana (Colla) Hook.

externa Skottsb.

EQUISETACEAE

Equisetum

bogotense H.B.K.

giganteum L.

GLEICHENIACEAE

Gleichenia

cryptocarpa Hook.

litoralis (Phil.) C. Chr.

quadripartita (Poir.) Moore

squamulosa (A.N. Desv.) Moore var. squamulosa

var. gunckeliana (Looser) Duek

GRAMMITIDACEAE

Grammitis

magellanica A.N. Desv.

patagonica (C. Chr.) Parris

poeppigiana (Mett.) Pic. Ser.

Xiphopteris

trichomanoides (Sw.) Copel.

HYMENOPHYLLACEAE

Hymenoglossum

cruentum (Cav.) K. Presl

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Hymenophyllum

caudiculatum Mart. var. productum (K. Presl) C.

Chr.

cuneatum Kunze var. cuneatum

var. rariforme C. Chr. et Skottsb. fma. rari-

forme

fma. imbricata C. Chr. et Skottsb.

darwinii Hook. f. ex V. den Bosch

dentatum Cav.

dicranotrichum (K. Presl) Sadeb.

falklandicum Baker var. falklandicum fma. fal-

klandicum

fma. andinum Diem et Licht.

var. elongatum Diem et Licht.

ferrugineum Colla var. ferrugineum

var. donatii Looser

fuciforme Sw.

krauseanum Phil.

nahuelhuapiense Diem et Licht.

pectinatum Cav.

peltatum (Poir.) A.N. Desv. var. peltatum

var. elongatum Diem et Licht.

var. minor Diem et Licht.

var. patagonicum Diem et Licht.

plicatum Kaulf. var. plicatum

polyanthos (Sw.) Sw.

rugosum C. Chr. et Skottsb. fma. rugosum

fma. lanceolatum C. Chr. et Skottsb.

secundum Hook. et Grev.

seselifolium K. Presl

tortuosum Hook. et Grev. var. tortuosum

var. glomeratum Diem et Licht.

tunbridgense (L.) J.E. Sm. var. tunbridgense

var. asperulum (Kunze) Diem et Licht.

umbratile Diem et Licht.

Serpyllopsis

caespitosa (Gaud.) C. Chr. var. caespitosa

var. densifolia (Phil.) C. Chr.

var. elongata (Hook.) C. Chr.

var. fernandeziana C. Chr. et Skottsb.

Trichomanes

exsectum Kunze

ingae C. Chr.

philippianum Sturm

ISOETACEAE

Isoetes

savatieri Franchet

15

LOMARIOPSIDACEAE

Elaphoglossum

gayanum (Fée) Moore

mathewsu (Fée) Moore

porteri Hicken

skottsbergii Krajina

squamatum (Sw.) Moore

LOPHOSORIACEAE

Lophosoria

quadripinnata (J.F. Gmel.) C. Chr.

LYCOPODIACEAE

Huperzia

selago (L.) Bernh. ex Schrank et Mart.

Lycopodium

alboffi Rolleri

chonoticum Phil.

confertum Willd.

gayanum Remy et Fée

looseri Herter

magellanicum (P. Beauv.) Sw.

paniculatum A.N. Desv.

MARSILEACEAE

Marsilea

sp.

Pilularia

americana Braun

OPHIOGLOSSACEAE

Botrychium

australe R. Br. ssp. negeri (Christ) Clausen

dusenii (Christ) Alston

Ophioglossum

crotalophoroides Walter

fernandezianum C. Chr.

lusitanicum L. ssp. coriaceum (Cunn.) Clausen

nudicaule L.f. var. robustum Licht.

reticulatum L.

vulgatum L. var. valdivianum (Phil.) Licht.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

POLYPODIACEAE

Phymatodes (Ver Phymatosorus)

Phymatosorus

scolopendria (Burm. f.) Pic. Ser.

Pleopeltis

macrocarpa (Bory ex Willd.) Kaulf.

Polypodium

espinosae Weath.

feuillei Bert. var. feuillei

var. ibañezii Looser

intermedium Colla ssp. intermedium

ssp. masafueranum C. Chr. et Skottsb.

masafuerae Phil.

PSILOTACEAE

Psilotum

nudum (L.) Griseb.

SALVINIACEAE

Salvinia

* auriculata Aubl.

SCHIZAEACEAE

Schizaea

fistulosa Labill.

SELAGINELLACEAE

Selaginella

* apoda (L.) Fern.

THELYPTERIDACEAE

Thelypteris

argentina (Hieron.) Abbiatti

dentata (Forssk.) St.-John

espinosae (Hicken) Rodr.

interruptus (Willd.) Iwats.

THYRSOPTERIDACEAE

Thyrsopteris

elegans Kunze

VITTARIACEAE

Vittaria

elongata Sw.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

GYMNOSPERMAE

ARAUCARIACEAE

Araucaria

araucana (Mol.) K. Koch

CUPRESSACEAE

Austrocedrus

chilensis (D. Don) Pic. Ser. et Bizz.

Fitzroya

cupressoides (Mol.) Johnst.

Pilgerodendron

uviferum (D. Don) Florin

EPHEDRACEAE

Ephedra

andina Poepp. ex C.A. Mey.

breana Phil.

frustillata Miers

gracilis Phil.

17

multiflora Phil. ex Stapf

rupestris Benth.

trifurcata Zoell.

PINACEAE

Pinus

* radiata D. Don

PODOCARPACEAE

Dacrydium

fonckii (Phil.) Ball

Podocarpus

nubigena Lindl.

saligna D. Don

Prumnopitys

andina (Poepp. ex Endl.) de Laub.

Saxe-gothaea

conspicua Lindl.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

ANGIOSPERMAE : DICOTYLEDONEAE

ACANTHACEAE

Dicliptera

paposana Phil.

Stenandrium

dulce (Cav.) Nees

AEXTOXICACEAE

Aextoxicon

punctatum R. et P.

AIZOACEAE

Carpobrotus

aequilaterus (Haw.) N.E. Br.

Glinus

radiatus (R. et P.) Rohrb.

Mesembryanthemum

* cristallinum L.

Tetragonia

angustifolia Barn.

copiapina Phil.

espinosae Muñoz

macrocarpa Phil. var. macrocarpa

var. microcarpa (Phil.) Reiche

maritima Barn.

ovata Phil.

pedunculata Phil.

tenella Johnst.

tetragonoides (Pallas) O.K.

*

trigona Phil.

AMARANTHACEAE

Alternanthera

halimifolia (Lam.) Standl.

junciflora (Remy) Johnst.

Amaranthus

asplundii Thell.

* cruentus L.

* deflexus L.

* hybridus L.

looseri Suess.

Gomphrena

meyeniana Walp.

umbellata Remy

ANACARDIACEAE

Haplorhus

peruviana Engler

Lithrea (1)

caustica (Mol.) H. et A.

Schinus

Kauselii Barkley

latifolius (Gill. ex Lindl.) Engler

marchandii Barkley

molle L. var. areira (L.) DC.

var. rusbyi Barkley

montanus (Phil.) Engler

patagonicus (Phil.) Johnst. var. patagonicus

var. crenuloides (Barkley) Barkley

pearcel Engler

polygamus (Cav.) Cabr. var. polygamus

var. parviflorus (March.) Barkley

velutinus (Turcz.) Johnst.

APOCYNACEAE

Elytropus

chilensis (A.DC.) Muell.-Arg.

Skytanthus

acutus Meyen

Vinca

* major L.

ARALIACEAE

Pseudopanax

laetevirens (Gay) Franchet

valdiviensis (Gay) Seem. ex Reiche

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

ARISTOLOCHIACEAE

Aristolochia

bridgesii (Klotzsch) Duchart.

chilensis Bridges ex Lindl.

ASCLEPIADACEAE

Asclepias

* curassavica L.

Astephanus

geminiflorus Dcne.

Cynanchum

acutifolium (Phil.) Reiche

boerhaviifolium H. et A.

lancifolium H. et A.

mucronatum (Dcne.) Reiche

myrtifolium H. et A.

nummulariifolium H. et A. var. nummulariifo-

lium

var. biflorum (Phil.) Reiche

pachyphyllum (Dcne.) Schum.

undulatum (Dcne.) Schum.

viride (Phil.) Reiche

Diplolepis

menziesil Schult.

Philibertia

rahmeri (Phil.) Malme

Tweedia

birostrata (H. et A.) H. et A.

brevipes (Phil.) Malme

confertiflora (Dcne.) Malme

obliquifolia (Colla) Malme

BALANOPHORACEAE

Ombrophytum

subterraneum (Aspl.) Hansen

BERBERIDACEAE

Berberis

actinacantha Mart.

brachyacantha Phil.

brachybotria Gay

brevifolia Phil. ex Reiche

bidentata Lechler

19

buxifolia Lam. var. buxifolia

var. antucoana (Schneid.) Orsi

var. nuda Schneid.

chilensis Gill. ex Hook.

chillanensis (Schneid.) Sprague ex Bean

ciliaris Lindl. var. ciliaris

coletioides Lechler

congestiflora Gay

coquimbensis Muñoz

corymbosa H. et A. var. corymbosa

var. paniculata Phil.

costulata Gand.

crispa Gay

darwinii Hook. var. darwinii

diffusa Gay

empetrifolia Lam.

ferox Gay

florida Phil.

fragrans Phil. ex Reiche

glomerata H. et A. var. glomerata

var. zahlbruckneriana (Schneid.) Ahrendt

grevilleana Gill. ex H. et A.

hakeoides (Hook. f.) Schneid.

heterophylla A.L. Juss. ex Poir.

horrida Gay

ilicifolia L.f.

knighti (Lindl.) K. Koch

linearifolia Phil. var. linearifolia

var. longifolia (Reiche) Ahrendt

litoralis Phil.

marginata Gay

masafuerana Skottsb.

microphylla G. Forster

montana Gay

mutabilis Phil.

parodii Job

petiolata Graham

philippii Ahrendt

pilosifolia Ahrendt

polymorpha Phil.

polypetala Phil.

pseudo-ilicifolia Skottsb.

rotundifolia P. et E.

serrato-dentata Lechler

setigrifolia Ahrendt

spinosissima (Reiche) Ahrendt

trigona Kunze ex P. et E.

valdiviana Phil. var. valdiviana

var. gracilifolia Ahrendt

variifolia Schneid.

wawrana Schneid.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

BETULACEAE

Alnus

* glutinosa (L.) Gaertn.

BIGNONIACEAE

Argylia

adscendens DC. var. adscendens

var. viridis (Phil.) Gleisn. et Ric.

bifrons Phil.

bustillosii Phil.

checoensis (Meyen) Johnst.

farnesiana Gleisn. et Ric.

geranioides DC.

glutinosa Phil.

potentillifolia DC.

radiata (L.) D. Don

tomentosa Phil.

uspallatensis DC.

Campsidium

valdivianum (Phil.) Skottsb.

Eccremocarpus

scaber R. et P.

Tecoma

fulva (Cav.) G. Don

BORAGINACEAE

Amsinckia

calycina (Moris) Chater

tessellata A. Gray

Anchusa

* arvensis (L.) Bieb.

Borago

* officinalis L.

Coldenia (Ver Tiquilia)

Cordia

decandra H. et A.

Cryptantha

alfalfalis (Phil.) Johnst.

alyssoides (A.DC.) Reiche

aprica (Phil.) Reiche

argentea Johnst.

aspera (Phil.) Grau

20

calycina (Phil.) Reiche

calycotricha Johnst.

capituliflora (Clos) Reiche

chaetocalyx (Phil.) Johnst.

chispae Grau

clandestina (Trev.) Johnst.

cynoglossoides (Phil.) Johnst.

debilis (Phil.) Reiche

dichita (Phil.) Johnst.

diffusa (Phil.) Johnst.

dimorpha (Phil.) Greene

diplotricha (Phil.) Reiche

dolichophylla (Phil.) Reiche

filaginea (Phil.) Reiche

filiformis (Phil.) Reiche

gay1 Johnst.

globulifera (Clos) Reiche

glomerata Lehm. ssp. glomerata

ssp. quadrinuculata Grau

glomerulifera (Phil.) Johnst.

gnaphalioides (A.DC.) Reiche

haplostachya (Phil.) Johnst.

hispida (Phil.) Reiche

involucrata (Phil.) Reiche

kingi (Phil.) Reiche

linearis (Colla) Greene

longifolia (Phil.) Reiche

marticorenae Grau

parviflora (Phil.) Reiche

phaceloides (Clos) Reiche

romanii Johnst.

spathulata (Phil.) Reiche

subamplexicaulis (Phil.) Reiche

taltalensis Johnst.

volckmannii (Phil.) Johnst.

werdermanniana Johnst.

Cynoglossum

* creticum Mill.

* limense Willd.

' paniculatum H. et A.

* zeylanicum Thunb.

Echium

* plantagineum L.

* vulgare L.

Heliotropium

* angiospermum Murr.

chenopodiaceum (A.DC.) Clos var. chenopodia-

ceum

var. ericoideum (Miers) Reiche

curassavicum L. var. curassavicum

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

eremogenum Johnst.

filifolium (Miers) Johnst.

floridum (A.DC.) Clos

geissei F. Phil.

glutinosum Phil.

huascoense Johnst.

inconspicuum Reiche

jaffuelii Johnst.

krauseanum Fedde

linariaefolium Phil.

longistylum Phil.

megalanthum Johnst.

microstachyum R. et P.

myosotifolium (A.DC.) Reiche

paronychioides A.DC.

patagonicum Johnst.

philippianum Johnst.

* procumbens Mill.

pycnophyllum Phil.

sclerocarpum Phil.

sinuatum (Miers) Johnst.

stenophyllum H. et A.

taltalense (Phil.) Johnst.

Myosotis

albiflora Banks et Soland. ex Hook. f.

antarctica Hook. f.

azorica H. Wats.

discolor Pers. ssp. discolor

ssp. canariensis (Pitard) Grau

latifolia Poir.

laxa Lehm.

scorpioides L.

stricta Link ex Roem. et Schult.

kk *Xk

E * * %*

Nesocaryum

stylosum (Phil.) Johnst.

Pectocarya

anomala Johnst.

dimorpha (Johnst.) Johnst.

linearis (R. et P.) DC. ssp. linearis

ssp. ferocula (Johnst.) Thorne

pusilla (A.DC.) A. Gray

Plagiobothrys

armeniifolius (Phil.) Johnst.

calandrinioides (Phil.) Johnst.

collinus (Phil.) Johnst.

corymbosus (R. et P.) Johnst.

foliosus (Phil.) Johnst.

fulvus (H. et A.) Johnst.

germainii (Phil.) Johnst.

gracilis (R. et P.) Johnst.

oppositifolius (Phil.) Johnst.

pedicellaris (Phil.) Johnst.

polycaulis (Phil.) Johnst.

pratensis (Phil.) Johnst.

procumbens (Colla) A. Gray

pulchellus (Phil.) Johnst.

tinctorius (R. et P.) A. Gray

uliginosus (Phil.) Johnst.

verrucosus (Phil.) Johnst.

Selkirkia

berterii (Colla) Hemsl.

Tiquilia

atacamensis (Phil.) Richardson

grandiflora (Phil.) Richardson

litoralis (Phil.) Richardson

paronychioides (Phil.) Richardson

tacnensis Richardson

BUDDLEJACEAE

Buddleja

globosa Hope

suaveolens Kunth et Bouché

CACTACEAE (2)

Acanthocalycium

andreaeanum (Back.) Donald

Arequipa

hempeliana (Guercke) Oehme

leucotricha (Phil.) Britton et Rose

soehrensii (Kreuz.) Back.

weingartiana Back. var. weingartiana

var. carminanthema Back.

Austrocactus

hibernus Ritter

philippii (Regel et Schmidt) Buxb.

Austrocylindropuntia

miquelii (Monv.) Back. var. miquelii

var. jilesii Back.

Browningia

candelaris (Meyen) Britton et Rose

Copiapoa

alticostata Ritter

applanata Back.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

bridgesil (L. Pfeiffer) Back.

calderana Ritter

carrizalensis Ritter var. carrizalensis

var. gigantea Ritter

chaniaralensis Ritter

cinerascens (Salm-Dyck) Britton et Rose

cinerea (Phil.) Britton et Rose var. cinerea

var. albispina Ritter

var. columna-alba (Ritter) Back.

var. dealbata (Ritter) Back.

conglomerata (Phil.) Lembcke

coquimbana (Karw.) Britton et Rose var. coquim-

bana

var. wagenknechtil Ritter

cuprea Ritter

dura Ritter

echinata Ritter var. echinata

var. borealis Ritter

echinoides (Lem.) Britton et Rose

eremophila Ritter

ferox Lembcke et Back.

gigantea Back.

grandiflora Ritter

haseltoniana Back.

humilis (Phil.) Hutch.

hypogaea Ritter

intermedia Ritter

krainziana Ritter var. krainziana

var. scopulina Ritter

lembckei Back.

longispina Ritter

longistaminea Ritter

malletiana (Lem.) Back.

marginata (Salm-Dyck) Britton et Rose

megarrhiza Britton et Rose

mollicula Ritter

montana Ritter

pendulina Ritter

pepiniana (Schum.) Back. var. pepiniana

var. fiedlerana (Schum.) Back.

pseudocoquimbana Ritter var. pseudocoquim-

bana

var. vulgata Ritter

rubriflora Ritter

rupestris Ritter

serpentisulcata Ritter var. serpentisulcata

var. castanea Ritter

taltalensis (Werd.) Looser

tenuissima Ritter

totoralensis Ritter

Corryocactus

brachypetalus (Vaupel) Britton et Rose

Krausii Back.

22

Erdisia

philipii (Regel et Schum.) Britton et Rose

spiniflora (Phil.) Britton et Rose

Eriosyce

ceratistes (Otto) Britton et Rose var. ceratistes

var. combarbalensis Back.

var. coquimbensis Back.

var. jorgensis Back.

mollesensis Back.

vallenarensis Back.

zorillaensis Back.

var.

Eulychnia

acida Phil.

aricensis Ritter

castanea Phil.

iquiquensis (Schum.) Britton et Rose

procumbens Back.

saint-pieana Ritter

spinibarbis (L. Pfeiffer) Britton et Rose

Haageocereus

australis Back.

Helianthocereus

atacamensis (Phil.) Britton et Rose

Horridocactus (Ver Neoporteria)

Maihuenia

poeppigil (Otto) A. Weber

Neochilenia (Ver Neoporteria)

Neoporteria

aricensis (Ritter) Don. et Rowl.

aspillagae (Soehr.) Back. -

calderana (Ritter) Don. et Rowl. fma. calderana

fma. gracilis (Ritter) Don. et Rowl.

chilensis (Hildm.) Britton et Rose fma. chilensis

fma. confinis (Hildm.) Don. et Rowl.

choapensis (Ritter) Don. et Rowl.

chorosensis (Ritter) Don. et Rowl.

clavata (Soehr.) Werd. var. clavata

var. procera Ritter

coimasensis Ritter

confinis (Ritter) Don. et Rowl.

crispa (Ritter) Don. et Rowl.

curvispina (Bert. ex Colla) Don. et Rowl. var.

curvispina

var. aconcaguensis (Ritter) Don. et Rowl.

fma. aconcaguensis

fma. orientalis (Ritter) Don. et Rowl.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

var. andicola (Ritter) Don. et Rowl. fma. an-

dicola

fma. descendens (Ritter) Don. et Rowl.

fma. mollensis (Ritter) Don. et Rowl.

fma. robusta (Ritter) Don. et Rowl.

var. carrizalensis (Ritter) Don. et Rowl.

var. echinus (Ritter) Don. et Rowl. fma.

echinus

fma. minor (Ritter) Don. et Rowl.

var. garaventae (Ritter) Don. et Rowl.

var. geissei (Poselg.) Don. et Rowl. fma.

geissel

fma. albicans (Hildm.) Don. et Rowl.

var. grandiflora (Ritter) Don. et Rowl.

var. heinrichiana (Back.) Don. et Rowl.

var. kesselringiana (Doelz) Don. et Rowl.

fma. kesselringiana

fma. subaequalis (Back.) Don. et Rowl.

var. lissocarpa (Ritter) Don. et Rowl. fma.

lissocarpa

fma. gracilis (Ritter) Don. et Rowl.

var transitensis (Ritter) Don. et Rowl.

var. vallenarensis (Ritter) Don. et Rowl.

deherdtiana (Back.) Don. et Rowl.

dimorpha (Ritter) Don. et Rowl.

engleri (Ritter) Don. et Rowl. var. engleri

var. krausii (Back.) Don. et Rowl.

eriocephala (Back.) Don. et Rowl. var. erioce-

phala |

var. glaucescens (Ritter) Don. et Rowl.

eriosyzoides (Ritter) Don. et Rowl.

esmeraldana (Ritter) Don. et Rowl.

fusca (Muehlenpf.) Britton et Rose

hankeana (Foerst.) Don. et Rowl. var. hankeana

var. minor (Lab.) Don. et Rowl.

var. taltalensis (Back.) Don. et Rowl.

huascensis (Ritter) Don. et Row!l.

intermedia (Ritter) Don. et Rowl.

iquiquensis (Ritter) Don. et Rowl.

Jussieui (Monv.) Britton et Rose var. jussieui

var. fobeana (Mieck.) Don. et Rowl.

Kkrainziana (Ritter) Don. et Rowl.

kunzei (Foerst.) Back.

laniceps Ritter

marksiana (Ritter) Don. et Rowl. var. marksiana

var. tunensis (Ritter) Don. et Rowl.

monte-amargensis (Back.) Don. et Rowl.

multicolor Ritter

napina (Phil.) Back. var. napina

var. mitis (Phil.) Don. et Rowl. fma. mitis

fma. glabrescens (Ritter) Don. et Rowl.

var. spinosior Back. fma. spinosior

fma. mebbesii (Hildm.) Don. et Rowl.

23

nidus (Soehr.) Britton et Rose fma. nidus

fma. densispina (Ito) Don. et Rowl.

fma. senilis (Phil.) Don. et Rowl.

occulta (Phil.) Britton et Rose

odieri (Lem.) Back. var. odieri

var. araneifera Don. et Rowl.

odoriflora (Ritter) Back.

paucicostata (Ritter) Don. et Rowl. var. paucicos-

tata

var. viridis (Ritter) Don. et Rowl.

pilispina (Ritter) Don. et Rowl. fma. pilispina

fma. pygmaea (Ritter) Don. et Row.

planiceps Ritter

rapifera Ritter

recondita (Ritter) Don. et Rowl.

reichei (Schum.) Back. var. reichei fma. reichei

fma. aerocarpa tRitter) Don. et Row.

fma. carneoflora (Kilian) Don. et Rowl.

fma. duripulpa (Ritter) Don. et Row.

fma. floribunda (Back.) Don. et Rowl.

fma. imitans (Back.) Don. et Row]l.

fma. lembckei (Back.) Don. et Rowl.

fma. neoreichei (Back.) Don. et Rowl.

fma. pseudoreichei (Lembcke et Back.)

Don. et Rowl.

var. malleolata (Ritter) Don. et Rowl. fma.

malleolata

fma. krausii (Ritter) Don. et Row].

fma. solitaria (Ritter) Don. et Row].

residua (Ritter) Don. et Rowl.

ritteri Don. et Rowl.

robusta Ritter

rupicola (Ritter) Don. et Rowl.

scoparia (Ritter) Don. et Rowl.

setiflora (Back.) Don. et Rowl.

setosiflora (Ritter) Don. et Rowl. var. setosiflora

var. intermedia (Ritter) Don. et Rowl.

simulans (Ritter) Don. et Rowl.

sociabilis Ritter var. sociabilis

var. napina Ritter

subaiana (Back.) Don. et Rowl.

subgibbosa (Haw.) Britton et Rose var. subgibbo-

sa fma. subgibbosa

fma. castanea (Ritter) Don. et Rowl.

fma. castaneoides (Cels) Don. et Rowl.

fma. heteracantha (Back.) Don. et Rowl.

fma. litoralis (Ritter) Don. et Rowl.

fma. subcylindrica (Back.) Don. et Rowl.

fma. tunensis (Ritter) Don. et Rowl.

var. mamillarioides (Hook.) Don. et Rowl.

var. microsperma (Ritter) Don. et Rowl. fma.

microsperma

fma. serenana (Ritter) Don. et Rowl.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

var. nigrihorrida (Back.) Don. et Rowl. fma.

nigrihorrida

fma. major (Back.) Don. et Rowl.

fma. minor (Back.) Don. et Rowl.

taltalensis Hutch.

totoralensis (Ritter) Don. et Rowl.

tuberisulcata (Jacobi) Don. et Rowl. var. tuberi-

sulcata

var.

armata (Ritter) Don. et Rowl.

atroviridis (Ritter) Don. et Rowl.

cupreata (Poselg.) Don. et Rowl.

froehlichiana (Schum.) Don. et Rowl.

nigricans (Linke) Don. et Rowl.

robusta (Ritter) Don. et Rowl.

vegasana (Ritter) Don. et Rowl.

villosa (Monv.) Berger var. villosa

var atrispinosa (Back.) Don. et Row].

var. cephalophora (Back.) Don. et Rowl.

var. polyraphis (L. Pfeiffer) Borg

wagenknechtii Ritter var. wagenknechtii

var. napina Ritter

woutersiana (Back.) Don. et Rowl.

var.

Neowerdermannia

chilensis Back.

Opuntia

soehrensii Britton et Rose

Oreocereus

hendriksenianus Back. var. hendriksenianus

variicolor Back. var. variicolor

Pyrrhocactus (Ver Neoporteria)

Reicheocactus

pseudoreicheanus Back.

Soehrensia

uebelmanniana Lembcke et Back.

Tephrocactus

atacamensis (Phil.) Back. var. atacamensis

var. chilensis (Back.) Back.

bolivianus (Salm-Dick) Back.

camachoi (Esp.) Back.

conoides Ritter

dimorphus (Foerst.) Back. var. dimorphus

var. pseudorauppianus (Back.) Back.

echinaceus Ritter

glomeratus (Haw.) Back.

heteromorphus (Phil.) Back.

ignescens (Vaupel) Back. var. ignescens

var. steinianus Back.

24

leoninus (Ruempl.) Back.

ovatus (L. Pfeiffer) Back.

parvisetus Back.

pentlandii (Salm-Dyck) Back.

reicheanus (Esp.) Back.

tarapacanus (Phil.) Back.

Trichocereus

chiloensis (Colla) Britton et Xose var. chiloensis

var. eburneus (Phil.) Marsh.

coquimbanus (Mol.) Britton et Rose

deserticola (Werd.) Back.

fulvilanus Ritter

glaucus Ritter var. pendens (Ritter) Back.

litoralis (Johow) Looser

nigripilis (Phil.) Back.

skottsbergii Back. var. skottsbergii

var. breviatus Back.

CAESALPINIACEAE

Balsamocarpon

brevifolium Clos

Caesalpinia

angulata (H. et A.) Baillon

aphylla Phil.

* bonduc (L.) Roxb.

* gilliesii (Hook.) D. Dietr.

-Spinosa (Mol.) O.K.

Hoffmanseggia

doellii Phil. ssp. doellii

eremophila (Phil.) Burk. ex Ulib.

glauca (Ort.) Eifert

gracilis (R. et P.) H. et A.

ternata Phil.

trifoliata Cav. var. trifoliata a

Senna

arnottiana (Gill. ex H. et A.) Irw. et Barneby

birostris (Domb. ex Vogel) Irw. et Barneby var.

arequipensis (Vogel) Irw. et Barneby

brongniartii (Gaud.) Irw. et Barneby

candolleana (Vogel) Irw. et Barneby

cruckshanksii (H. et A.) Irw. et Barneby

cumingii (H. et A.) Irw. et Barneby var. cumingu

var. alcaparra (Phil.) rw. et Barneby

var. coquimbensis (Vogel) Irw. et Barneby

var. eremobia (Phil.) Irw. et Barneby

septemtrionalis (Viv.) Irw. et Barneby

stipulacea (Aiton) Irw. et Barneby var. stipulacea

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

var. anglorum Irw. et Barneby

urmenetae (Phil.) Irw. et Barneby

Zuccagnia (3)

punctata Cav.

CALLITRICHACEAE

Callitriche

antarctica Engelm. ex Hegelm.

autumnalis L.

lechleri (Hegelm.) Fassett

terrestris Rafin. ssp. turfosa (Bert. ex Hegelm.)

Bacig.

verna L.

CALYCERACEAE

Boopis

anthemoides A.L. Juss. var. anthemoides

australis Dcne. var. australis

var. hickenii Pontir.

var. squarrosa (Miers) Reiche

filifolia Speg.

gracilis Phil.

graminea Phil. var. graminea

var. bracteata Reiche

multicaulis Phil.

patagonica Speg.

pusilla Phil.

Calycera

balsamitifolia (A.L. Juss.) L.C. Rich.

crassifolia (Miers) Hicken var. crassifolia

eryngioides Remy

herbacea Cav. var. herbacea

var. sinuata (Miers) Pontir.

var. viridiflora (Phil.) Pontir.

integrifolia (Phil.) Reiche

intermedia Phil.

involucrata Phil.

leucanthema (Poepp.) Reiche

pulvinata Remy

sessiliflora Phil. var. sessiliflora

var. axillaris (Miers) Reiche

squarrosa Miers

Gamocarpha

dentata Phil.

gilliesii Miers var. gilliesii

25

poeppigii DC. var. poeppigii

var. angustifolia (Phil.) Reiche

polycephala Phil.

pumila Miers

selliana Reiche var. selliana

var. multicaulis Dusén

Moschopsis

leyboldii Phil.

monocephala (Phil.) Reiche

rosulata (N.E. Br.) Dusén

subandina (Speg.) Dusén

trilobata Dusén

Nastanthus

agglomeratus Miers var. agglomeratus

var. breviflorus (Phil.) Reiche

var. gayanus (Phil.) Reiche

var. gilliesii (Miers) Reiche

var. laciniatus (Miers) Reiche

var. pinnatifidus (Miers) Reiche

caespitosus (Phil.) Reiche var. caespitosus

var. ventosus (Meyen) Pontir.

compactus (Phil.) Miers

scapiger (Remy) Miers

spathulatus (Phil.) Miers var. spathulatus

var. bellidifolius (Phil.) Pontir.

CAMPANULACEAE

Cyphocarpus

innocuus Sandw.

psammophilus Ricardi

rigescens Miers fma. rigescens

fma. glabratus Phil. ex Wimmer

Downingia

pusilla (Poepp. ex Cham.) Torr.

Hypsela

reniformis (H.B.K.) K. Presl

Legenere

valdiviana (Phil.) Wimmer

Lobelia

alata Labill. var. alata

blanda (D. Don) Wimmer

bridgesii H. et A.

excelsa Bonpl.

mucronata Cav. var. mucronata fma. mucronata

fma. hookeri (A. DC.) Wimmer

fma. ovalifolia Wimmer

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

var. berterii (A. DC.) Wimmer

ovata (Phil.) Reiche

polyphylla H. et A. var. polyphylla fma. poly-

phylla

fma. subdentata (K. Presl) Wimmer

var angustifolia H. et A. fma. angustifolia

fma. hyssopifolia (K. Presl) Wimmer

fma. linearifolia (Phil.) Wimmer

var. besseriana (K. Presl) Reiche fma. besse-

riana

fma. bracteosa (K. Presl) Wimmer

var. latifolia (A. DC.) Wimmer

tupa L. var. tupa

var bicalcarata (Zahlb.) Wimmer

var. montana (Phil.) Reiche

Pratia

longiflora Hook. f.

repens Gaud.

Triodanis

biflora (R. et P.) Greene

Wahlenbergia

berteroi H. et A.

fernandeziana A. DC.

grahamae Hemsl.

larrainii (Bert. ex Colla) A. DC.

linarioides (Lam.) A. DC.

masafuerae (Phil.) Skottsb. fÍma. masafuerae

fma. rosea Skottsb.

CAPPARACEAE

Cleome

chilensis DC. var. chilensis

var. pubescens DC.

CAPRIFOLIACEAE

Sambucus

* nigra L.

CARICACEAE

Carica

chilensis (Planch. ex A. DC.) Solms

26

CARYOPHYLLACEAE

Agrostemma

* githago L.

Arenaria

digyna Schlecht.

fastigiata Phil.

microphylla Phil.

oligosperma Naud.

pleurantha Phil.

rivularis Phil.

serpens H.B.K.

*

serpyllifolia L.

Cardionema

andinum (Phil.) Nels. et Macbr.

kurtzii Subils

ramosissimum (Weinm.) Nels. et Macbr.

Cerastium

* arvense L.

* holosteoides Fries

montioides Naud.

Colobanthus

quitensis (H.B.K.) Bartl.

subulatus (D'Urv.) Hook. f. var. subulatus

var. darwinii Hook. f.

Corrigiola

crassifolia Chaudhri

propinqua Gay

squamosa H. et A. var. squamosa

var. latifolia (Gay) Skottsb.

var. poeppigii Chaudhri

Drymaria

cordata (L.) Willd. ex Roem. et Schult.

engleriana (Muschl.) Baehni et Macbr. var. devia

(Baehni et Macbr.) Duke

paposana Phil. var. paposana

Herniaria

* cinerea DC.

Honkenya

peploides (L.) Ehrh.

Lychnis

* chalcedonica L.

* coronaria (L.) Desr.

Microphyes

litoralis Phil.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

minimus (Bert. ex Colla) Briq. * armeria L.

robustus Ricardi var. robustus chilensis (Naud.) Bocq.

var. pallidus Ricardi chubutensis (Speg.) Bocq.

Miera h dioica (L.) Clairv.

gallica L.

acutiflora (Fenzl) Mattf. magellanica (Desr.) Bocq.

Paronychia mandonii (Rohrb.) Bocq.

patagonica (Speg.) Bocq.

plutonica Naud.

* vulgaris (Moench) Garcke

chilensis DC. ssp. chilensis var. chilensis

var. mutica (Phil.) Reiche

ssp. subandina (Phil.) Chaudhri

coquimbensis Gay Spergula

franciscana Eastw.

johnstonii Chaudhri

* arvensis L.

microphylla Phil. var. microphylla Spergularia

: aberrans Johnst.

P h

a 38 arbuscula (Gay) Johnst.

* nauteuilii (Burnat) P.W. Ball et Heyw. bocconii (Scheele) Aschers. et Graebn.

* prolifera (L.) P.W. Ball et Heyw. cerviana (Cham. et Schlecht.) G. Don

confertiflora Steud. var. confertiflora

var. polyphylla (Phil.) Skottsb.

cremnophila Johnst.

Philippiella

patagonica Speg.

Polycarpon denticulata Phil.

* tetraphyllum (L.) L. depauperata (Gay) Rohrb.

fasciculata Phil.

Pycnophyllum floribunda (Gay) Rohrb.

bryoides (Phil.) Rohrb. * marina (L.) Griseb.

macropetalum Mattf. masafuerana Skottsb.

markgrafianum Mattf. * media (L.) K. Presl ex Griseb.

molle Remy pissisii (Phil.) Johnst.

spathulatum Mattf. platensis (Cambess.) Fenzl

ha Rossb.

Rei pycnant

o | * rubra (L.) J. et K. Presl

andicola (Phil.) Pax stenocarpa (Phil.) Johnst.

Sagina villosa (Pers.) Cambess.

apetala Ard. var. apetala Stellaria

var. pachyrrhiza (Phil.) Reiche abortiva Naud.

var. valdiviana (Phil.) Reiche * alsine Grimm

var. urbica (Phil.) Reiche arvalis Phil.

chilensis Naud. chilensis Ped.

* procumbens L. debilis D'Urv.

Sanctambrosia * lanceolata Poir.

*

media (L.) Vill.

manicata Skottsb. ex Kuschel parviflora Banks et Soland. ex Hook. f.

Saponaria

* officinalis L.

CELASTRACEAE

Scleranthus

á L Maytenus

la boaria Mol.

Silene chubutensis (Speg.) Lourt., O'Don. et Sleum.

andicola Gill. ex H. et A. disticha (Hook. f.) Urban

antarctica (O.K.) Ped. magellanica (Lam.) Hook. f.

27

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

CERATOPHYLLACEAE ssp. halophilum (Phil.) Aellen

magellanicum (Hook. f.) B. et H.

multifidum L.

murale L.

nesodendron Skottsb.

papulosum Moq.

CHENOPODIACEAE petiolare H.B.K.

philippianum Aellen

Ceratophyllum

X* X

chilense Leyb.

Atriplex quinoa Willd.

angustifolia Phil. sanctae-clarae Johow

atacamensis Phil. sancti-ambrosii Skottsb.

chapinii Johnst. * urbicum L.

chilensis Colla zoellneri Aellen

clivicola Johnst. . ,

coquimbana Phil. La

costellata Phil. occidentalis (Moq.) S. Wats.

deserticola Phil.

imbricata (Moq.) Dietr.

leuca Phil. Salsola

madariagae Phil. * Kali L.

mucronata Phil.

myriophylla Phil.

nummularia Lindl.

oreophila Phil. Suaeda

patula L.

peruviana Moq.

philippii R.E. Fries

repanda Phil.

rosea L.

semibaccata R. Br.

suberecta Verd.

taltalensis Johnst. COMPOSITAE

triangularis Willd.

vulgatissima Speg.

Salicornia (Ver Sarcocornia)

Sarcocornia

fruticosa (L.) Scott

*

argentinensis Soriano

divaricata Moq.

nesophila Johnst.

patagonica Speg. var. patagonica

XX * %

*

Abrotanella

crassipes Skottsb.

Bassia emarginata (Cass. ex Gaud.) Cass.

* hyssopifolia (Pallas) O.K. linearifolia A. Gray

Chenopodium submarginata A. Gray

* album L. ssp. album var. polymorphum Aellen Achillea

ambiguum R. Br.

ambrosioides L. var. andicola (Phil.) Aellen

var. suffruticosum (Willd.) Aellen Achyrocline

antarcticum (Hook. f.) Hook. f. tomentosa Rusby

carnulosum Moq.

chilense Schrad.

crusoeanum Skottsb. chilense Less.

frigidum Phil.

glaucum L. ssp. ambiguum (R. Br.) Thell. et Ae-

* millefolium L.

Adenocaulon

Ageratum

*

* conyzoides L.

llen

graveolens Willd. var. bangii (Murr) Aellen Agoseris

* hircinum Schrad. chilensis (Less.) Greene

macrospermum Hook. f. ssp. macrospermum coronopifolia (D'Urv.) Chamb. ex D.M. Moore

28

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA y M. QUEZADA

Amblyopappus

pusillus H. et A.

Ambrosia

* artemisifolia L.

artemisioides Meyen et Walp.

chamissonis (Less.) Greene

* tenuifolia Spreng.

Anaphalis

chilensis Reiche

Antennaria

chilensis Remy var. chilensis

var. magellanica (Sch. Bip.) Reiche

Anthemis

* arvensis L.

* cotula L.

Aphyllocladus

denticulatus (Remy) Cabr. var. denticulatus

var. calvus (Phil.) Cabr.

Arctium

* minus (J. Hill) Bernh.

Arctotheca

* calendula (L.) Levyns

Arctotis (Ver Arctotheca)

Arnica

* angustifolia Vahl

Artemisia

* absinthium L.

copa Phil. var. copa

var. trifida Acev.

magellanica Sch. Bip.

Aster

bellidiastrum Nees ex Walp.

glabrifolius (DC.) Reiche

peteroanus Phil.

squamatus (Spreng.) Hieron.

vahlii (Gaud.) H. et A. var. vahlii

var. tenuifolius (Phil.) Cabr.

Baccharis

acaulis (Wedd. ex R. E. Fries) Cabr.

bezanilleana Remy

boliviensis (Wedd.) Cabr.

caespitosa (R. et P.) Pers.

concava (R. et. P.) Pers. var. concava

var. floribunda Heer.

confertifolia Bert. ex Colla var. confertifolia

var. latifolia Heer.

cymosa Phil.

elaeoides Remy

gayana Phil.

genistelloides (Lam.) Pers.

incarum Wedd.

intermedia DC.

juncea (Lehm.) Desf.

kraussei Heer. ex Reiche

linearis (R. et P.) Pers.

lycioides Remy

macraei H. et A. var. macraei

var. intermedia Heer.

var. lucida Heer.

magellanica (Lam.) Pers.

neaei DC.

negeri Heer. ex Reiche

nivalis (Wedd.) Sch. Bip. ex Phil.

obovata H. et A. var. obovata

var. poeppigiana (DC.) Cabr.

pallida Heer. ex Reiche

paniculata DC.

patagonica H. et A.

pedicellata DC.

petiolata DC. var. petiolata

var. rotundifolia Phil.

philippii Heer.

pingraea DC.

pycnantha Phil.

racemosa (R. et P.) DC.

rhetinodes Meyen et Walp.

rhomboidalis Remy

rupicola H.B.K.

sagittalis (Less.) DC.

salicifolia (R. et P.) Pers.

santelicis Phil.

spartioides (H. et A.) Remy

sphaerocephala H. et A.

taltalensis Johnst.

valdiviana Phil.

volckmannii Phil.

Bahia

ambrosioides Lag.

Bellis

* perennis L.

Belloa

argentea (Wedd.) Cabr.

chilensis (H. et A.) Remy

piptolepis (Wedd.) Cabr.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

punae (Cabr.) Cabr. Centipeda

subspicata Wedd. elatinoides (Less.) B. et H. ex O. Hoffm.

Bidens Chaetanthera

andicola H.B.K. var. cosmantha (Griseb.) Sherff acerosa (Remy) B. et H. ex Griseb. var. acerosa

var. descomposita O.K.

* laevis (L.) B.S.P.

* pilosa L. var. pilosa

var. alausensis (H.B.K.) Sherff

var. apiifolia (DC.) Sherff

var. minor (Blume) Sherff

var. radiata Sch. Bip.

triplinervia H.B.K. var. triplinervia

var. macrantha (Wedd.) Sherff

Blennosperma

chilense Less.

Brachyandra (Ver Helogyne)

Brachyclados

lycioides D. Don

Calendula

* arvensis L.

* officinalis L.

Calopappus

acerosus Meyen

Carduus

* nutans L.

* pycnocephalus L.

Carthamus

* lanatus L.

* tinctorius L.

Centaurea

atacamensis (Reiche) Johnst.

bulbosa H. et A.

cachinalensis Phil.

calcitrapa L.

chilensis H. et A. var. chilensis

var. breviloba DC.

var. stenolepis Phil.

floccosa H. et A.

gayana Remy

melitensis L.

monocephala Remy

* nigra L.

solstitialis L.

*

Centaurodendron

dracaenoides Johow

palmiforme Skottsb.

var. dasycarpa Cabr.

apiculata (Remy) Meigen

aymarae Martic. et Quez.

brachylepis Phil.

chilensis (Wiild.) DC. var. chilensis

var. argentea (Phil.) Cabr.

var. involucrata (Phil.) Cabr.

var. tenuifolia (Gill. ex D. Don) Cabr.

ciliata R. et P.

dioica (Remy) B.L. Rob.

elegans Phil. var. elegans

var. pratensis (Phil.) Cabr.

var. pulchra Cabr.

euphrasioides (DC.) Meigen

flabellata D. Don

flabellifolia Cabr.

glabrata (DC.) Meigen

glandulosa Remy

gnaphalioides (Remy) Johnst.

incana Poepp. ex Less.

lanata (Phil.) Johnst.

leptocephala Cabr.

limbata (D. Don) Less.

linearis Poepp. ex Less. var. linearis

var. albiflora Phil.

var. taltalensis Johnst.

lycopodioides (Remy) Cabr.

microphylla (Cass.) H. et A. var. microphylla

var. albiflora (Phil.) Cabr.

minuta (Phil.) Cabr.

moenchioides Less.

planiseta Cabr.

pulvinata (Phil.) Haum. var. pulvinata

var. polymalla (Phil.) Hicken

pusilla (D. Don) H. et A.

renifolia (Remy) Cabr.

revoluta (Phil.) Cabr.

serrata R. et P.

spathulifolia Cabr.

sphaeroidalis (Reiche) Hicken

splendens (Remy) B.L. Rob.

stuebeli¡ Hieron.

tenella Less. var. tenella

var. taltalensis Cabr.

valdiviana Phil.

villosa D. Don

Chamomilla (Ver también Matricana)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

* recutita (L.) Rausch.

* suaveolens (Pursh) Rydb.

Chaptalia

exscapa (Pers.) Baker var. chilensis (DC.) Burk.

Chersodoma

arequipensis (Cuatr.) Cuatr.

candida Phil.

jodopappa (Sch. Bip.) Cabr.

Chevreulia

diemii Cabr.

pusilla DC.

sarmentosa (Pers.) Blake

Chiliophyllum

densifolium Phil.

fuegianum O. Hoffm.

Chiliotrichum

diffusum (G. Forster) O.K.

rosmarinifolium Less.

Chrysanthemoides

* monilifera (L.) Norl.

Chrysanthemum (Ver también Coleostephus)

* coronarium L.

Chuquiraga

acicularis D. Don

atacamensis O.K.

kuschelii Acev.

oppositifolia D. Don

spinosa Less. ssp. australis Ezc.

ssp. rotundifolia (Wedd.) Ezc.

ulicina (H. et A.) H. et A. ssp. ulicina

ssp. acicularis (D. Don) Ezc.

Cichorium

* intybus L.

Cirsium

* arvense (L.) Scop.

* vulgare (Savi) Ten.

Cnicus |

* benedictus L.

Coleostephus

* myconis (L.) Reichenb. f.

Conyza

arabidifolia Remy

artemisiifolia Meyen et Walp.

31

australis Phil.

bonariensis (L.) Cronq.

bustillosiana Remy

chilensis Spreng.

copiapina Phil.

deserticola Phil.

dumetorum Phil.

floribunda H.B.K.

foliosa Phil.

gayana Phil.

glabrata Phil.

larrainiana Remy

lateralis Phil.

lechleri (Sch. Bip.) Cabr.

minutiflora Phil.

modesta Phil.

pencana Phil.

spicata Phil.

spiculosa (H. et A.) Cabr.

suffruticosa Phil.

tenera Phil.

thermarum Phil.

valdiviana Phil.

Coreopsis

suaveolens Sherff

Cotula

* australis (Sieb. ex Spreng.) Hook. f.

* coronopifolia L.

mexicana (DC.) Cabr.

scariosa (Cass.) Franchet

Crepis

* capillaris (L.) Wallr.

* setosa Haller f.

* vesicaria L. ssp. taraxacifolia (Thuill.) Thell.

Cryptostemma (Ver Arctotheca)

Cynara

* cardunculus L.

Dasyphyllum

diacanthoides (Less.) Cabr.

excelsum (D. Don) Cabr.

Dendroseris

berteriana (Dcne.) H. et A.

gigantea Johow

litoralis Skottsb.

macrantha (Bert. ex Dcne.) Skottsb.

macrophylla D. Don

marginata (Bert. ex Dcne.) H. et A.

micrantha Bert. ex DC.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

neriifolia (Dcne.) H. et A.

pinnata (Bert. ex Dcne.) H. et A.

pruinata (Johow) Skottsb.

regia Skottsb.

Diplostephium

cinereum Cuatr.

meyenii Wedd.

tacorense Hieron.

Doniophyton

anomalum (D. Don) Kurtz

patagonicum (Phil.) Hieron.

Eclipta

* prostrata (L.) L.

Encelia

canescens Lam. var. canescens

var. lanuginosa Johnst.

var. oblongifolia (DC.) Blake

var. parvifolia (H.B.K.) Ball

var. tomentosa (Walp.) Ball

Erechtites

leptantha (Phil.) Cabr.

Eriachaenium

magellanicum Sch. Bip.

Erigeron

andicola DC.

cinereus H. et A.

fasciculatus Colla

fernandezianus (Colla) Solbrig

gilliesii (H. et A.) Cabr.

illapelinus Phil.

ingae Skottsb.

* Kkarwinskianus DC.

leptopetalus Phil.

luteoviridis Skottsb.

luxurians (Skottsb.) Solbrig

myosotis Pers.

othonnifolius H. et A.

patagonicus Phil:

pratensis Phil.

rosulatus Wedd.

rupicola Phil.

Eupatorium (4)

glechonophyllum Less.

salvia Colla

Facelis

plumosa (Wedd.) Sch. Bip.

32

retusa (Lam.) Sch. Bip. var. retusa

var. andicola (Nees) Beauverd

var. chilensis (Fisch. et Mey.) Baker ex Beau-

verd

Filago

* gallica L.

Flaveria

bidentis (L.) O.K.

Flourensia

thurifera (Mol.) DC.

Galinsoga

parviflora Cav.

quadriradiata R. et P.

Gamochaeta

affinis (D'Urv.) Cabr.

aliena (H. et A.) Cabr.

americana (Mill.) Wedd.

andina (Phil.) Cabr.

axillaris (Remy) Cabr.

berteriana (DC.) Cabr.

chamissonis (DC.) Cabr.

depilata (Phil.) Cabr.

deserticola Cabr.

monticola (Phil. ex Reiche) Cabr.

munnozil Cabr.

neuquenensis Cabr.

nivalis Cabr.

polybotrya (Phil.) Cabr.

procumbens (Phil.) Cabr.

sphacelata (H.B.K.) Cabr.

spicata (Lam.) Cabr.

spiciformis (Sch. Bip.) Cabr.

stachydifolia (Lam.) Cabr.

Gnaphalium

aldunateoides Remy

andicola Phil.

cheiranthifolium Lam.

coquimbense Phil.

cymatoides Kunze ex DC. var. cymatoides

var. glabrum Walp.

diminutivum Phil.

gayanum Remy

glandulosum Klatt

heterophyllum Phil.

heterotrichum Phil.

illapelinum Phil. var. illapelinum

var. lanatum Phil.

lacteum Meyen et Walp.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

landbeckii Phil.

* luteoalbum L.

moelleri Phil.

montevidense Spreng.

oliganthum Phil.

philippii Cabr.

perpusillum Phil.

phaeolepis Phil.

pratense Phil.

pseudo-helichrysum Reiche

psilophyllum Meyen et Walp.

puberulum DC.

ramosum Phil.

remyanum Phil.

robustum Phil.

suffruticosum Phil.

tarapacanum Phil.

ulophyllum H. et A.

viravira Mol.

Gochnatia

foliolosa (D. Don) D. Don ex H. et A. var. folio-

losa

var. fascicularis (D. Don) Cabr.

Grindelia

andina (Phil.) Phil.

chiloensis (Corn.) Cabr.

glutinosa (Cav.) Dunal

tarapacana Phil.

Gutierrezia

baccharoides Sch. Bip.

espinosae Acev.

gayana (Remy) Reiche

neaeana (DC.) Blake

resinosa (H. et A.) Blake

taltalensis Phil.

Gypothamnium

pinifolium Phil.

Haplopappus

angustifolius (DC.) Reiche

anthylloides Meyen et Walp.

araucanus Phil.

arbutoides Remy

baylahuen Remy

bezanillanus (Remy) Reiche

breviradiatus Reiche

bustillosianus Remy

canescens (Phil.) Reiche

cerberoanus (Remy) Reiche

chrysanthemifolius (Less.) DC.

chryseus (O.K.) Cabr.

decurrens Remy

deserticola Phil.

diplopappus Remy var. diplopappus

donianus (H. et A.) Reiche

elatus (Phil.) Reiche

foliosus DC.

glutinosus Cass. fma. glutinosus

fma. patagonicus (Phil.) Cabr.

grindelioides (Less.) DC.

hirtellus Phil.

humilis (Phil.) Reiche

illinitus Phil.

integerrimus (H. et A.) Hall var. integerrimus

var. punctatus (Willd.) Br. et Clark

ischnos (Phil.) Reiche

kingii (Phil.) Reiche

linifolius (Phil.) Reiche

litoralis Phil.

macraeanus (Remy) Reiche

macrocephalus (Less.) DC.

marginalis Phil.

meyenii Walp.

mucronatus H. et A.

multifolius Phil. ex Reiche

ochagavianus Phil.

parvifolius (DC.) A. Gray

paucidentatus Phil.

pectinatus Phil.

pedunculosus Remy

philippii (O.K.) Hall

phyllophorus Reiche

pinnatifidus Nutt.

platylepis Phil.

pristiphyllus (Remy) Hall

prunelloides (Less.) DC. var. prunelloides

pulchellus DC.

reicheanus Hall

remyanus Wedd.

rengifoanus Remy

reticulatus (Phil.) Reiche

rigidus Phil.

rosulatus Hall

rotundifolius Hall

saxatilis (Remy) Reiche

scaposus Remy

schumannii (O.K.) Br. et Clark

scrobiculatus (Nees) DC.

stelliger Remy

stolpii Phil.

taeda Reiche

uncinatus Phil.

Gayana, Bot. 492 (1-2), 1985

velutinus Remy

villanuevae Phil.

Hedypnois

* cretica (L.) Dum. Cours.

Helenium

aromaticum (Hook.) Bailey

atacamense Cabr.

glaucum (Cav.) Stuntz

insulare (Phil.) Cabr.

ovallense Bierner

urmenetae (Phil.) Cabr. var. urmenetae

var. leguiffei (Phil.) Bierner

vallenariense (Phil.) Bierner

Helianthus

* tuberosus L.

Helogyne

apaloidea Nutt.

macrogyne (Phil.) B.L. Rob.

Hesperoseris (Ver Dendroseris)

Heterosperma

nanum (Nutt.) Sherff

ovatifolium Cav.

Hieracium

antarcticum D'Urv. var. antarcticum

var. myosotidifolium (Sch. Bip.) Sleumer

* aurantiacum L.

chilense Less.

* eriosphaerophorum Zahn

glaucifolium Poepp. ex Froel.

patagonicum Hook. f.

* pilosela L. ssp. euronotum Naeg. et Peter

Hinterhubera

scoparia (Phil.) Cabr.

Hypochaeris

acaulis (Remy) Britton

apargioides H. et A.

arenaria Gaud. var. arenaria

var. andina (DC.) Cabr.

barbata (Sch. Bip.) Reiche

clarionoides (Remy) Reiche var. clarionoides

var. microphylla (Remy) Cabr.

chondrilloides (A. Gray) Cabr.

cupressorum F. Phil.

deserticola Phil.

eremophila Cabr.

eriolaena (Sch. Bip.) Reiche

34

gayana (DC.) Cabr.

glabra L.

grandidentata (Phil.) Reiche

hispidula Phil.

hookeri Phil.

incana (H. et A.) Maclosk. var. incana

var. integrifolia (Sch. Bip.) Cabr.

jussieui (Sch. Bip.) Reiche

laciniosa Phil.

lessingii (Sch. Bip.) Reiche

melanolepis Phil.

minima Desf.

montana (Phil.) Reiche

nahuelbutae Phil.

palustris (Phil.) De Wild.

pilosa Reiche

psychrophila (Wedd.) Reiche

radicata L.

scorzonerae (DC.) F. Muell. var. scorzonerae

spathulata (Remy) Reiche var. spathulata

var. chiloensis (Remy) Reiche

spinuligera (Phil.) Reiche

stenocephala (A. Gray ex Wedd.) O.K.

taltalensis Reiche

tenerifolia (Remy) Dusén

tenuifolia (H. et A.) Griseb. var. tenuifolia

var. eurylepis (Phil.) Cabr.

thrincioides (Remy) Reiche

volckmannii Phil.

*

Hysterionica

* jasionoides Willd.

Lactuca

* sativa L.

* serriola L.

Lagenifera

hariotii (Franchet) Dudley

hirsuta (Poepp. ex Less.) Dudley

nudicaulis (Comm. ex Lam.) Dudley

Lapsana

* communis L.

Lasthenia

kunthii (Less.) H. et A.

Leontodon

* taraxacoides (Vill.) Mérat

Lepidophyllum

cupressiforme (Lam.) Cass.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Leptocarpha

rivularis DC.

Leucanthemum

* vulgare Lam.

Leucheria

achillaefolia H. et A.

amoena Phil.

apifolia Phil.

bridgesii H. et A.

candidissima D. Don

cerberoana Remy

coerulescens Remy

congesta D. Don

cumingii H. et A.

daucifolia (D. Don) Crisci

floribunda DC.

garciana Remy

gayana (Remy) Reiche

gilliesii H. et A.

glabriuscula (Phil.) Reiche

glacialis (Poepp. ex Less.) Reiche

glandulosa D. Don

hahnii Franchet

hieracioides Cass.

integrifolia (Phil.) Crisci

landbeckii (Phil.) Reiche

leontopodioides (O.K.) Schum.

lithospermifolia (Less.) Reiche

magna Phil.

menana Remy

millefolium Dusén et Skottsb.

multiflora Phil.

nutans (Remy) Reiche

oligocephala Remy

paniculata Poepp. ex Less.

papillosa Cabr.

polyclados (Remy) Reiche

pteropogon (Griseb.) Cabr.

purpurea (Vahl) H. et A.

rosea Poepp. ex Less.

runcinata D. Don

salina (Remy) Hieron. ssp. salina

ssp. zoellneri Crisci

scrobiculata D. Don

senecioides H. et A.

tenuis Less.

thermarum (Phil.) Phil.

tomentosa (Less.) Crisci

viscida (Bert. ex Colla) Crisci

Leunisia

laeta Phil.

Lophopappus

tarapacanus (Phil.) Cabr.

Lucilia

alpina (P. et E.) Cabr.

araucana Phil.

eriophora Remy

nivea (Phil.) Cabr.

Luciliopsis

argentina Cabr.

Lycapsus

tenuifolius Phil.

Macrachaenium

gracile Hook. f. var. gracile

Madia

chilensis (Nutt.) Reiche

sativa Mol.

Malacothrix

chevelandii A. Gray

coulteri A. Gray

Marticorenia

foliosa (Phil.) Crisci

Matricaria (Ver también Chamomilla)

* perforata Mérat

Micropsis

nana D.C.

Microseris

pygmaea D. Don

Mikania

araucana Phil.

Mniodes

coarctata Cuatr.

Moscharia

pinnatifida R. et P.

solbrigii Crisci

Mutisia

acerosa Poepp. ex Less.

acuminata R. et P. var. hirsuta (Meyen) Cabr.

araucana Phil.

brachyantha Phil.

cana Poepp. ex P. et E.

decurrens Cav. var. decurrens

var. patagonica (Phil.) Blake

hamata Reiche

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

ilicifolia Cav. var. ilicifolia

var. decandolleana (Phil.) Cabr.

involucrata Phil.

lanigera Wedd.

latifolia D. Don fma. latifolia

fma. bracteata (Remy) Cabr.

ledifolia Dcne. ex Wedd. fma. ledifolia

linearifolia Cav.

macrophylla Phil.

oligodon P. et E.

rosea Poepp. ex Less.

sinuata Cav.

spectabilis Phil.

spinosa R. et P. var. spinosa

var. pulchella (Speg.) Cabr.

splencens Renjifo

subspinosa Cav.

subulata R. et P. fma. subulata

fma. rosmarinifolia (P. et E.) Cabr.

tridens Poepp. ex Less.

Nardophyllum

bryoides (Lam.) Cabr.

chiliotrichioides (Remy) A. Gray

genistoides (Phil.) A. Gray

lanatum (Meyen) Cabr.

obtusifolium H. et A.

Nassauvia

aculeata (Less.) P. et E. var. aculeata

var. azorelloides (Speg.) Cabr.

var. robusta (Cabr.) Cabr.

argentea Phil.

axillaris (Lag.) D. Don

cumingii H. et A.

darwinii (H. et A.) O. Hoffm. et Dusén

dentata Griseb.

digitata Wedd.

dusenii O. Hoffm.

fuegiana (Speg.) Cabr.

glomerata (Gill. ex D. Don) Wedd.

glomerulosa (Lag.) D. Don

lagascae (D. Don) Meigen var. lagascae

var. globosa Skottsb.

var. lanata (Phil.) Skottsb.

latissima Skottsb.

looseri Cabr.

maeviae Cabr.

magellanica J.F. Gmel.

pinnigera D. Don

pulcherrima Cabr.

pygmaea (Cass.) Hook. f. var. pygmaea

var. intermedia (Phil.) Cabr.

36

pyramidalis Meyen

ramosissima DC.

revoluta D. Don

sprengelioides DC.

uniflora (D. Don) Haum.

Noticastrum

adscendens DC.

album Phil.

antucense Phil.

eriophorum Remy

leucopappum Phil.

marginatum (H.B.K.) Cuatr.

pradense (Phil.) Phil.

sericeum (Less.) Less. ex Phil.

Onopordum

* acanthium L.

Ophryosporus

johnstonii B.L. Rob.

origanioides (Meyen et Walp.) Hieron.

paradoxus (H. et A.) Benth. ex B.L. Rob.

triangularis Meyen

Oxyphyllum

ulicinum Phil.

Pachylaena

atriplicifolia D. Don ex H. et A.

rosea Johnst.

Parastrephia

lepidophylla (Wedd.) Cabr.

lucida (Meyen) Cabr.

phylicaeformis (Meyen) Cabr.

quadrangularis (Meyen) Cabr.

teretiuscula (O.K.) Cabr.

Parthenium

* hysterophorus L.

Perezia

atacamensis (Phil.) Reiche

bellidifolia (Phil.) Reiche

calophylla (Phil.) Reiche

capito (Phil.) Reiche

carthamoides (D. Don) H. et A.

ciliosa (Phil.) Reiche

fonckii (Phil.) Reiche

lactucoides (Vahl) Less. ssp. lactucoides

ssp. palustris (Phil.) Vuill.

linearis Less.

lyrata (Remy) Wedd.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

magellanica (L.f.) Lag.

megalantha Speg.

multiflora (H. et B.) Less.

nutans Less.

pedicularifolia Less.

pilifera (D. Don) H. et A.

poeppigil Less.

prenanthoides Less.

purpurata Wedd.

pygmaea Wedd.

recurvata (Vahl) Less. ssp. recurvata

ssp. triceps (Phil.) Cabr.

spathulata (Lag. ex D. Don) H. et A.

variabilis (Phil.) Reiche

Perityle

emoryi Torr.

Phoenicoseris (Ver Dendroseris)

Picris

* echioides L.

Picrosia

longifolia D. Don

Piqueria

cumingii B.L. Rob.

floribunda DC.

pinifolia (Phil.) Hieron. ex B.L. Rob.

Plazia

cheiranthifolia (Remy) Wedd.

daphnoides Wedd.

Pleocarphus

revolutus D. Don

Pluchea

chingoyo DC.

Podanthus

mitiqui Lindl.

ovatifolius Lag.

Polyachyrus

annuus Johnst.

carduoides Phil.

cinereus Ric. et Weldt

fuscus Meyen et Walp.

poeppigii (Kunze ex Less.) Less. ssp. poeppigii

ssp. multifidus (D. Don) Ric. et Weldt

sphaerocephalus D. Don

Proustia

cuneifolia D. Don fma. cuneifolia

37

fma. cinerea (Phil.) Fabris

fma. tipia (Phil.) Fabris

ilicifolia H. et A. fma. ilicifolia

fma. baccharoides (D. Don) Fabris

pyrifolia DC. fma. pyrifolia

fma. glandulosa (DC.) Fabris

Psila (Ver Bacchanis)

Psilocarphus

brevissimus Nutt.

Rea (Ver Dendroseris)

Rhetinodendron

berterii (DC.) Hemsl.

Robinsonia

evenia Phil.

gayana Dcne.

gracilis Dcne.

macrocephala Dcne.

masafuerae Skottsb.

thurifera Dcne.

Schkuhria

multiflora H. et A.

pinnata (Lam.) O.K.

Scolymus

* hispanicus L.

Senecio

acanthifolius Hombr. et Jacq. var. acanthifolius

var. virens (Phil.) Cabr. et Zard.

adenophyllus Meyen et Walp.

adenotrichius DC.

alcicornis H. et A.

algens Wedd.

alloeophyllus O. Hoffm.

almeidae Phil.

amphibolus Wedd. var. amphibolus

var. socialis (Wedd.) Cabr.

angustissimus Phil.

anthemidiphyllus Remy

antofagastanus Cabr.

*

aquaticus J. Hill ssp. barbareifolius (Wimmer et

Grab.) Walters

argyreus Phil.

aristianus Remy

arleguianus Remy

arnicoides H. et A.

arnottii Hook. f.

aspericaulis Remy

atacamensis Phil.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

baccharidifolius DC.

bahioides H. et A.

balsamicus Phil.

barrosianus Cabr.

beaufilsii O.K.

behnii Ric. et Martic.

benaventianus Remy

bipontini Wedd.

brachylobus Phil.

bracteolatus H. et A. var. valderramae (Phil.)

Cabr.

breviscapus DC.

bridgesii H. et A.

brunonianus H. et A.

buglossus Phil.

bustillosianus Remy var. bustillosianus

var. borchersii (Phil.) Cabr.

cachinalensis Phil. var. cachinalensis

var. copiapinus (Phil.) Cabr.

calocephalus Poepp.

candidans DC.

candollii Wedd.

carnosus Phil.

cerberoanus Remy var. cerberoanus

var. lanatus Cabr.

chamomillifolius Phil.

chanaralensis Phil.

chilensis Less. var. chilensis

var. argophyllus (Phil.) Cabr. fma. argophy-

llus

fma. discoideus Cabr.

chillanensis Cabr.

chionophilus Phil.

chrysocomoides H. et A.

chrysolepis Phil.

clarioneifolius Remy

coquimbensis Phil.

coronopodiphyllus Remy

coscayanus Ric. et Martic.

covasii Cabr.

crepidioides Phil.

crithmoides H. et A.

ctenophyllus Phil.

culcitenellus Cuatr.

cumingii H. et A. var. cumingil

var. bracteosus (Remy) Cabr.

cuneatus Hook. f.

cymosus Remy

darwinii H. et A.

davilae Phil.

debilis Phil.

depressus H. et A.

dichotomus Phil.

38

digitatus Phil.

donianus H. et A.

eightsii H. et A.

elquiensis Cabr.

eriophyton Remy

eruciformis Remy var. eruciformis

var. brachycephalus (Phil.) Cabr.

espinosae Cabr.

farinifer H. et A.

filaginoides DC.

fistulosus Poepp. ex Less. var. fistulosus

var. ochroleucus (H. et A.) Cabr.

francisci Phil.

garaventai Cabr.

gayanus DC.

gilliesii H. et A.

glaber Less. var. glaber

var. pratensis (Phil.) Cabr.

glabratus H. et A.

gnidioides Phil. var. gnidioides

var. gilvus (Phil.) Cabr.

grandjotii Cabr.

graveolens Wedd.

grindeliifolius DC.

gunckelii Cabr.

haenkeanus Cuatr.

haenkei DC.

hakeifolius Bert. ex DC. var. hakeifolius

var. vidalii (Phil.) Reiche

haloragis Remy var. haloragis

var. glandulosus Cabr.

hickenii Haum.

hieracium Remy

hirsutulus Phil.

hirtus Cabr.

humifusus (Hook. f.) Cabr.

humillimus Sch. Bip.

illapelinus Phil.

illinitus Phil.

isernil Phil.

jacobeaeformis Remy

jaffuelii Cabr.

jarae Phil.

jilesii Cabr.

johnstonianus Cabr.

jorquerae Phil.

jungei Phil.

kingii Hook. f. var. kingi

var. paradoxus (Alboff) Cabr.

landbeckii Phil.

laetevirens Phil.

laevicaulis DC.

laseguei Hombr. et Jacq.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

*

lastarrianus Remy

laucanus Ric. et Martic.

leptocaulos Phil.

leucomallus A. Gray var. leucomallus

var. incisus A. Gray

leucophyton Phil.

leucus Phil.

linariifolius Poepp. ex DC. var. linariifolius

var. aclonetus (Phil.) Cabr.

var. heliophytoides (Phil.) Reiche

lithostaurus Cabr.

looseri Cabr.

lorentziella Hicken

luridus Phil.

madariagae Phil.

magellanicus H. et A.

mapuche Cabr.

martiniensis Dusén

maulinus Reiche

mesembrynus Cabr.

microcephalus Phil. var. microcephalus

microphyllus Phil.

micropifolius DC.

microtis Phil.

mikanioides Otto ex Walp.

minutifolius Phil.

miser Hook. f.

molinae Phil.

monttianus Remy

munnozil Cabr.

murinus Phil.

murorum Remy

myriophyllus Phil.

neaei DC. var. neaei

var. incisus DC.

nigrescens H. et A.

obtectus O.K.

olivaceobracteatus Ric. et Martic.

oreinus Cabr.

oreophyton Remy

otaeguianus Phil.

otites Kunze ex DC.

pachyphyllos Remy

pappii Ric. et Martic.

parodii Cabr.

patagonicus H. et A. var. patagonicus

var alyssoides (Sch. Bip.) Cabr.

var. andersonii (Hook. f.) Cabr.

var. lobatifolius (Hombr. et Jacq.) Cabr.

paucidentatus DC. var. paucidentatus

var. limbardioides (H. et A.) Cabr.

pentaphyllus Remy

peteroanus Phil.

39

*

pfisteri Ric. et Martic.

philippicus Regel et Koern.

philippii Sch. Bip. ex Wedd.

phylicifolius Poepp. ex DC.

pilquensis Buek

pissisii Phil.

planiflorus Kunze ex Cabr.

poeppigii H. et A. var. poeppigii

polygaloides Phil.

polyphyllus Kunze ex DC.

portalesianus Remy var. portalesianus

var. lanuginosus (Phil.) Cabr.

portulacoides Remy

prenanthifolius Phil.

proteus Remy var. proteus

var. geissei (Phil.) Cabr.

pseudalmeidae Cabr.

pubescens Phil.

puchii Phil.

pycnanthus Phil.

rahmeri Phil.

reicheanus Cabr. (5)

renjifoanus Phil.

ricardii Martic. et Quez.

rivularis Remy

rosmarinus Phil. var. rosmarinus

var. ascotanensis (Phil.) Cabr.

santiagoensis O.K.

saxicolus Wedd.

schoenemannii Phil.

scoparius Phil.

scorzonerifolius Meyen et Walp.

segethii Phil.

sericeonitens Speg.

serratifolius (Meyen et Walp.) Cuatr.

sinuatilobus DC.

skottsbergii Cabr. var. skottsbergii

var. anomalus Cabr.

smithii DC.

socompae Cabr.

spinosus DC.

subauritus Phil.

subdentatus Phil.

subdiscoideus Sch. Bip ex Wedd.

subpubescens Cabr.

subulatus D. Don ex H. et A. var. salsus (Griseb.)

Cabr.

subumbellatus Phil.

sundtii Phil.

sylvaticus L.

talquinus Phil.

tinctolobus Johnst.

tricuspidatus H. et A. var. tricuspidatus

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

var. dentatus (Sch. Bip.) Cabr.

var. dumosus (Phil.) Cabr.

trifidus H. et A.

trifurcatus (G. Forster) Less.

trifurcifolius Hieron.

triodon Phil. var. triodon

tripinnatifidus Reiche

tristis Phil.

troncosii Phil.

vaginifolius Sch. Bip.

viridis Phil. var. viridis

var. radiatus R.E. Fries

viscosissimus Colla

volckmannii Phil.

*

vulgaris L.

websteri Hook. f.

werdermannii Greenm.

xerophilus Phil. var. xerophilus

var. deserticola (Cabr.) Cabr.

yegua (Colla) Cabr. var. yegua

var. depilis (Phil.) Cabr.

var. pilotus (Phil.) Cabr.

zapahuirensis Martic. et Quez.

zoellneri Martic. et Quez.

zosterifolius H. et A.

Sigesbeckia

jorullensis H.B.K.

Silybum

* marianum (L.) Gaertn.

Solidago

chilensis Meyen

patagonica Phil.

Soliva

pterosperma (A.L. Juss.) Less.

sessilis R. et P.

stolonifera (Brot.) Loud.

valdiviana Phil.

Sonchus

* asper (L.) J. Hill

* oleraceus L.

* tenerrimus L.

Spilanthes

urens Jacq. var. hispidula DC.

Stevia

hyssopifolia Phil. var. hyssopifolia

var. panulensis B.L. Rob. ex Johnst.

Strongyloma (Ver Nassauvia)

Symphyochaeta (Ver Robinsona)

Tagetes

biflora Cabr.

* daucoides Schrad.

minuta L.

multiflora H.B.K.

Tanacetum

* parthenium (L.) Sch. Bip.

* vulgare L.

Taraxacum

gilliesii H. et A.

fernandezianum Dahlst.

* officinale Weber

Tessaria

absinthioides (H. et A.) DC.

Thamnoseris

lacerata (Phil.) F. Phil. fma. lacerata

fma. lobata (Johnst.) Skottsb.

Tragopogon

* porrifolius L.

Trichocline

aurea (D. Don) Reiche

caulescens Phil.

cineraria (D. Don) H. et A.

dealbata (H. et A.) B. et H. ex Griseb.

deserticola Zard.

Triptilion

achilleae DC.

benaventei Remy

berteroi Phil.

bulbosum Remy

capillatum (D. Don) DC. var. capillatum

var. andinum (Phil.) Reiche

var. laxum (Phil.) Reiche

cordifolium Lag. ex Lindl.

diffusum (D. Don) DC.

digitatum Phil.

dusenii O. Hoffm.

euphrasioides Bert. ex DC.

gibbosum Remy

pectinatum Phil. var. pectinatum

var. millefolium (Phil.) Reiche

ramulosum Phil.

spinosum R. et P. var. spinosum

var. eriochlaenum DC.

var. integrifolium (Phil.) Reiche

var. remyanum (Phil.) Reiche

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Trixis CONVOLVULACEAE

cacaloides D. Don Calystegi

Troximon (Ver Agosens) * sepium (L.) R. Br. var. sepium

var. americana (Sims) Kitag.

soldanella (L.) Roem. et Schult.

tuguriorum (G. Forster) R. Br. ex Hook. f.

Urmenetea

atacamensis Phil.

Urost 38 Convolvulus

* picroides (L.) Scop. ex F. Schm. in

Vasquezia (Ver Villanova) bonariensis Cav.

chilensis Pers.

Verbesina demissus Choisy

encelioides (Cav.) B. et H. ex A. Gray hermanniae L'Hérit.

saubinetia Klatt laciniatus Desr. var. laciniatus

var. hirsutus Desr.

Viguiera

adenotricha Blake

Cressa

atacamensis Phil. truxillensis H.B.K.

gayana (Phil.) Cabr. ex Esp. Dichondra

pazensis Rusby

revoluta (Meyen) Blake

sericea Sw. var. sericea

var. holosericea (O'Donell) Fabris

var. microcalyx (Hallier) Buck

Villanova

oppositifolia Lag. Evolvulus

robusta Phil. sericeus Sw. var. sericeus

var. elongatus (Choisy) O'Donell

Wedelia

: Ipomoea

glauca (Ort.) O. Hoffm. ex Hicken

dumetorum (H.B.K.) Willd. ex Roem. et Schult.

Werneria

aretioides Wedd.

ciliolata A. Gray

denticulata Blake Coriaria

glaberrima Phil.

heteroloba Wedd. fma. microcephala Rockh.

CORIARIACEAE

ruscifolia L.

incisa Phil.

PR CORNACEAE

pseudodigitata Rockh. Griselinia

pygmaea Gill. ex H. et A. jodinifolia (Griseb.) Taub.

solivifolia Sch. Bip.

spathulata Wedd.

weddellii Phil.

racemosa (Phil.) Taub.

ruscifolia (Clos) Taub. var. ruscifolia

scandens (R. et P.) Taub.

Xanthium

o ak CRASSULACEAE

* spinosum L.

* strumarium L. ssp. italicum (Moretti) D. Lóve Crassula

closiana (Gay) Reiche

Yunquea connata (R. et P.) Berger

tenzii Skottsb. moschata G. Forster

41

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

ovallei (Phil.) Reiche

peduncularis (J.E. Sm.) Meigen

solieri (Gay) Meigen

tillaea Lest.-Garl.

Sedum

* acre L.

CRUCIFERAE

Agallis

lanata (Barn.) Gilg et Muschl. ex O. E. Schulz

Alyssum

* alyssoides (L.) L.

Barbarea

* verna (Mill.) Aschers.

Brassica

* napus L.

* oleracea L.

* Tapa L.

Capsella

* bursa-pastoris (L.) Medik.

Cardamine (6)

africana L.

bonariensis A.L. Juss. ex Pers. ssp. bonariensis

chenopodiifolia Pers.

geraniifolia (Poir.) DC.

glacialis (G. Forster) DC.

Cardaria

* draba (L.) A.N. Desv.

Coronopus

* didymus (L.) J.E. Sm.

leptocarpus Boelcke var. leptocarpus

var. microcarpus Boelcke

Crambe

* filiformis Jacq.

Cremolobus

chilensis (Lag. ex DC.) DC.

Descurainia

antarctica (Fourn.) O.E. Schulz var. antarctica

var. patagonica (Speg.) O.E. Schulz

athroocarpa (A. Gray) O.E. Schulz

cumingiana (Fisch. et Mey.) Prantl var. cumin-

glana

var. elegantula (Phil.) O.E. Schulz

ED

var. glabrescens (Speg.) O.E. Schulz

var. tenuissima (Phil.) Reiche

depressa (Phil.) Reiche var. depressa

var. pflanzii (Muschl.) O.E. Schulz

diversifolia O.E. Schulz var. diversifolia

var. cunninghamii O.EÉ. Schulz

erodiifolia (Phil.) Reiche

glaucescens (Phil.) O.E. Schulz

leptoclada Muschl.

nuttallii (Colla) O.E. Schulz

perkinsiana Muschl.

pimpinellifolia (Barn.) O.E. Schulz

pinnata (Walter) Britton

pulcherrima Muschl.

* sophia (L.) Webb. ex Prantl

stricta (Phil.) Prantl ex Reiche var. stricta

var. florida (Phil.) O.E. Schulz fma. florida

fma. umbellifera (Phil.) O.E. Schulz

var. minutiflora (Phil.) O.E. Schulz

var. rubescens (Phil.) O.E. Schulz

Diplotaxis

chilensis Barn.

Draba

alchemilloides Gilg ex Gilg et Muschl.

atacamensis Gilg ex Gilg et Muschl.

atuelica Chodat et Wilcz. var. leiocarpa O.E.

Schulz

australis R. Br.

azorellicola O.E. Schulz

funiculosa Hook. f.

gilliesii H. et A.

magellanica Lam.

philippi O.E. Schulz

schoenleinii Meigen

subglabrata (Speg.) O.E. Schulz

Eremodraba

intricatissima (Phil.) O.E. Schulz

Erophila

* verna (L.) Chev.

Eruca

* vesicaria (L.) Cav.

Eudema

friesii O.E. Schulz

hauthalii Gilg. et Muschl.

Grammosperma

dusenii O.E. Schulz

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Hesperis

* matronalis L.

Heterothrix (Ver Stenodraba)

Hollermayera

valdiviana (Phil.) Ravenna

Hymenolobus

procumbens (L.) Nutt. ex Torr. et Gray

Isatis

* tinctoria L.

Ivania

cremnophila (Johnst.) O.E. Schulz

Lepidium

aletes Macbr.

angustissimum Phil.

auriculatum Regel et Koern.

bipinnatifidum A.N. Desy.

bonariense L.

brevicaule Barn.

chichicara A.N. Desy.

cumingianum Fisch. et Mey.

curicoanum Phil.

horstii Johow ex Skottsb.

johnstonii C. Hitch.

meyeni Walp.

morrisonii C. Hitch.

myrianthum Phil.

nitidum Nutt. ex Torr. et Gray

philippianum (O.K.) Thell.

pseudo-didymus Thell. ex Druce

pubescens A.N. Desy.

rahmeri Phil.

raimondii O.E. Schulz

sativum L.

spathulatum Phil.

spicatum A.N. Desv.

strictum (S. Wats.) Rattan

subvaginatum Steud. ex Thell.

Lobularia

* maritima (L.) A.N. Desv.

Mancoa

hispida Wedd.

minima Rollins

Mathewsia

auriculata Phil.

biennis Bridges ex Turcz.

collina Johnst.

*

43

foliosa H. et A.

incana Phil.

nivea (Phil.) O.E. Schulz

Menonvillea

* alata Rollins

chilensis (Turcz.) Jacks. var. chilensis

var. aptera (Phil.) Rollins

cicatricosa (Phil.) Rollins

constitutionis (F. Phil.) Rollins

crassa Rollins

cuneata (Gill. et Hook.) Rollins

flexuosa Phil.

frigida (Phil.) Rollins

gay1 Phil.

hookeri Rollins

linearis DC. var. linearis

var. filifolia (Fisch. et Mey.) Rollins

litoralis (Barn.) Rollins

macrocarpa (Johnst.) Rollins

minima Rollins

nordenskjoeldii (Dusén) Rollins

orbiculata Phil. var. orbiculata

var. perplexa Rollins

perstylosa Rollins

pinnatifida Barn.

purpurea (Hast.) Rollins

spathulata (Gill. et Hook.) Rollins

virens (Phil.) Rollins

Microcardamum (Ver Hymenolobus)

Nasturtium

bonariense (Poir.) DC. var. bonariense

var. erectum (Trev.) O.E. Schulz fma.

erectum

fma. lechlerianum (O.K.) O.E. Schulz

* officinale R. Br. var. officinale

var. microphyllum Boenn.

var. siifolium (Phil.) Reiche

patens Phil.

sarmentosum (Hook. f. ex DC.) Rech. f.

Neuontobothrys

berningeri O.E. Schulz

linifolius (Phil.) O.E. Schulz

Onuris

alismatifolia Gilg ex Skottsb.

graminifolia Phil. var. graminifolia

papillosa O.E. Schulz

spegazziniana Gilg et Muschl.

Pennellia (Ver Stenodraba)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Phlebiophragmus

macrorrhizus (Muschl.) O.E. Schulz

Raphanus

* raphanistrum L.

* sativus L.

Rapistrum

* rugosum (L.) All.

Rorippa (Ver también Nasturtium)

austroamericana Mart.-Lab.

philippiana (Speg.) Maclosk.

* sylvestris (L.) Besser

Schizopetalon

bipinnatifidum Phil.

dentatum (Barn.) Gilg et Muschl. var. dentatum

var. san-romanil (Phil.) Gilg et Muschl.

gayanum Barn. var. gayanum

var. tenuifolium (Phil.) Reiche

rupestre (Barn.) Reiche

viride (Phil.) Reiche

walkeri Hook. var. walker

var. brongniartii (Barn.) Gilg et Muschl.

Sisymbrium

* altissimum L.

andinum Phil.

arnottianum Gill. ex H. et A.

austriacum Jacq.

commune (Speg.) Romanc.

*

corymbosum Phil. var. corymbosum

var. consanguineum (Phil.) O.E. Schulz

dianthoides Phil.

foliosum Phil.

frutescens Gill. ex H. et A.

grayanum Baehni et Macbr.

*irio E.

lanatum (Walp.) O.E. Schulz var. lanatum

var. fragile (Wedd.) O.E. Schulz

leptocarpum H. et A.

litorale Phil. var. litorale

var. virgatum O.E. Schulz

macrostachyum Phil.

magellanicum (A.L. Juss. ex Pers.) Hook. f.

officinale (L.) Scop.

orientale L.

philippianum Johnst.

polyphyllum Phil. |

pubescens (Phil.) O.E. Schulz var. pubescens

var. glabrescens O.E. Schulz

sagittatum H. et A.

X* *

44

tarapacanum Phil.

volckmannii Phil.

Stenodraba

andina (Phil.) O.E. Schulz var. andina

var. hirticaulis O.E. Schulz

chillanensis (Phil.) O.E. Schulz fma. chillanensis

fma. laxa O.E. Schulz

fastigiata (Phil.) Ravenna

glareosa Ravenna

imbricatifolia (Barn.) O.EÉ. Shulz var. imbricati-

folia

var. glabrata O.E. Schulz

lechleri (Fourn.) Ravenna

parvifolia (Phil.) O.E. Schulz

pusilla (Gill. ex H. et A.) Boelcke var. patagonica

(Phil.) Boelcke

stenophylla (Leyb.) O.E. Schulz var. stenophylla

var. leyboldii (Phil.) O.E. Schulz

suffruticosa (Barn.) O.E. Schulz var. suffruticosa

var. lagunae O.E. Schulz

vestita Ravenna

Thlaspi

* arvense L.

gracile Phil.

magellanicum Comm. ex Poir.

Urbanodoxa (Ver Cremolobus) (7)

Weberbauera

pusilla (Gill. ex H. et A.) O.E. Schulz

Werdermannia

anethifolia (Phil.) Johnst.

pinnata (Barn.) O.E. Schulz

Xerodraba

pectinata (Speg.) Skottsb.

CUCURBITACEAE

Sicyos

bryoniifolius Moris var. bryomiifolius

var. ambrosianus Skottsb.

CUNONIACEAE

Caldcluvia

paniculata (Cav.) D. Don

Weinmannia

trichosperma Cav.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

CUSCUTACEAE

Cuscuta

andina Phil.

chilensis Ker-Gawl.

epithymum (L.) Murray var. angustissima (En-

gelm.) Yuncker

micrantha Choisy

microstyla Engelm. var. microstyla

var. bicolor (Hunz.) Hunz.

odorata R. et P.

pauciflora Phil.

pentagona Engelm. var. calycina Engelm.

suaveolens Ser.

werdermannii Hunz.

DESFONTAINIACEAE

Desfontainia

spinosa R. et P.

DIPSACACEAE

Dipsacus

* sativus (L.) Honck.

Scabiosa

* atropurpurea L.

DONATIACEAE

Donatia

fascicularis J.R. et G. Forster

DROSERACEAE

Drosera

uniflora Willd.

ELAEOCARPACEAE

. Aristotelia

chilensis (Mol.) Stuntz

45

Crinodendron

hookerianum Gay

patagua Mol.

ELATINACEAE

Elatine

triandra Schkuhr

EMPETRACEAE

Empetrum

rubrum Vahl ex Willd.

EPACRIDACEAE

Lebetanthus

myrsinites (Lam.) Dusén

ERICACEAE

Gaultheria

antarctica Hook. f.

caespitosa P. et E.

nubigena (Phil.) Burtt et Sleumer

phillyreifolia (Pers.) Sleumer

renjifoana Phil.

tenuifolia (Phil.) Sleumer

Pernettya

insana (Mol.) Gunckel

mucronata (L.f.) Gaud. ex Spreng. var. mucro-

nata

var. angustifolia (Lindl.) Reiche

var. microphylla Hombr. et Jacq.

myrtilloides Zucc. ex Steud. var. myrtilloides

var. linifolia (Phil.) Kausel

var. nana (Sleumer) Sleumer

pumila (L.f.) Hook. var. pumila

var. crassifolia (Phil.) Sleumer

var. leucocarpa (DC.) Kausel

rigida (Bert. ex Colla) DC.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

ESCALLONIACEAE

(Ver SAXIFRAGACEAE)

EUCRYPHIACEAE

Eucryphia

cordifolia Cav.

glutinosa (P. et E.) Baillon

EUPHORBIACEAE

Adenopeltis

serrata (W. Aiton) Johnst.

Argythamnia

berterana (Schlecht.) Muell.-Arg. var. berterana

var. psiladenia (Skottsb.) Ingram

canescens (Phil.) F. Phil.

cremnophila (Johnst.) Ingram

tricuspidata (Lam.) Muell.-Arg.

Avellanita

bustillosii Phil.

Chiropetalum (Ver Argythamnia)

Colliguaja

dombeyana A.H.L. Juss.

integerrima Gill. et Hook.

odorifera Mol.

salicifolia Gill. et Hook.

Croton

chilensis Muell.-Arg.

Dysopsis

glechomoides (A. Rich.) Muell.-Arg.

hirsuta (Muell.-Arg.) Skottsb.

Eremocarpus

* setigerus (Hook.) Benth.

Euphorbia

araucana Phil.

besseri Boiss.

collina Phil. var. collina

var. andina (Phil.) Subils

copiapina Phil.

elquiensis Phil.

engelmannii Boiss.

* falcata L.

germainii Phil.

helioscopia L.

hirta L. var. procumbens (DC.) N.E. Br.

hypericifolia L.

lactiflua Phil.

lanceolata Phil.

lathyrus L.

macraulonia Phil.

meyeniana Klotzsch

minuta Phil.

ovalifolia (Klotzsch et Garcke) Boiss. var. ovali-

folia

ovalleana Phil.

peplus L.

platyphyllos L.

porphyrantha Phil.

portulacoides L. var. portulacoides

pygmaea Phil.

serpens H.B.K. var. serpens

tarapacana Phil.

thinophila Phil.

verna Phil.

E E %

*

Ricinus

* communis L.

FAGACEAE

Nothofagus

alessandri Esp.

alpina (P. et E.) Oerst.

antarctica (G. Forster) Oerst.

betuloides (Mirb.) Oerst.

dombeyi (Mirb.) Oerst.

glauca (Phil.) Krasser

leonii Esp.

nitida (Phil.) Krasser

obliqua (Mirb.) Oerst. var. obliqua

var. macrocarpa (A. DC.) Reiche

pumilio (P. et E.) Krasser

FLACOURTIACEAE

Azara

alpina P. et E.

celastrina D. Don

dentata R. et P.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

integrifolia R. et P.

lanceolata Hook. f.

microphylla Hook. f.

petiolaris (D. Don) Johnst.

serrata R. et P. var. serrata

var. fernandeziana (Gay) Reiche

Berberidopsis

corallina Hook. f.

FRANKENIACEAE

Anthobryum

triandrum (Remy) Surgis

Frankenia

chilensis K. Presl ex Roem. et Schult.

chubutensis Speg.

salina (Mol.) Johnst.

vidalii F. Phil.

FUMARIACEAE

Fumaria

* agraria Lag.

capreolata L.

officinalis L.

parviflora Lam.

* %*

GENTIANACEAE

Centaurium

cachanlahuen (Mol.) B.L. Rob.

* minus Moench

* pulchellum (Sw.) Druce

Cicendia

quadrangularis (Lam.) Griseb.

Gentiana (8)

lactea Phil.

pearcei Phil.

prostrata Haenke var. prostrata

var. americana Engelm.

var. podocarpa (Phil.) Griseb.

sedifolia H.B.K. var. sedifolia

var. compacta Griseb.

var. elongata Griseb.

var. imbricata Griseb.

var. lineata Phil.

tarapacana Gilg.

valdiviana Phil.

Gentianella (Ver también Gentiana)

gilliesii (Gilg) Martic. et Arroyo

magellanica (Gaud.) Fabris ex D.M. Moore

ottonis (Phil.) Muñoz

Microcala (Ver Cicendia)

GERANIACEAE

Erodium

* botrys (Cav.) Bertol.

* cicutarium (L.) L'Hérit. ex Aiton

* malacoides (L.) L'Hérit. ex Aiton var. malacoides

var. ribifolium (Jacq.) DC.

* moschatum (L.) L'Hérit. ex Aiton

Geranium

apricum Phil.

berterianum Colla ex Savi

caespitosum Phil.

colombinum L.

commutatum Steud.

core-core Steud.

dissectum L. var. dissectum

var. glabratum Hook.

geissei Knuth

hispidum Phil.

intermedium Colla ex Savi

* macrorrhizum L.

*

magellanicum Hook. f. var. magellanicum

*

molle L.

moorel Phil.

ochseni Phil.

philippii Macbr.

pyrenaicum Burm. f.

robertianum L.

sessiliflorum Cav.

skottsbergii Knuth

squamosum Phil.

submolle Steud.

*

GESNERIACEAE

Asteranthera

ovata (Cav.) Hanst.

Mitraria

coccinea Cav.

47

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Sarmienta

repens R. et P.

GOMORTEGACEAE

Gomortega

keule (Mol.) Baillon

GOODENIACEAE

Selliera

radicans Cav.

GUNNERACEAE

Gunnera

berteroi Phil.

bracteata Steud. ex J. Benn.

commutata Blume

glabra Phil.

insularis Phil.

lobata Hook. f.

magellanica Lam.

masafuerae Skottsb.

peltata Phil.

reichei Schindler

tinctoria (Mol.) Mirb.

vestita Schindler

HALORAGACEAE

Haloragis

masafuerana Skottsb. var. masafuerana

var. asperrima (Skottsb.) Orch.

masatierrana Skottsb.

Myriophyllum

aquaticum (Vell.) Verdc.

quitense H.B.K.

HIPPURIDACEAE

Hippuris

vulgaris L.

48

HYDRANGEACEAE

Hydrangea

serratifolia (H. et A.) F. Phil.

HYDROPHYLLACEAE

Nama

dichotomum (R. et P.) Choisy

undulatum H.B.K. var. australis C. Hitchc.

Phacelia

brachyantha Benth.

cumingil (Benth.) A. Gray

nana Wedd.

pinnatifida Griseb. ex Wedd.

secunda J.F. Gmel.

setigera Phil. var. setigera

HYPERICACEAE

Hypericum

* androsaemum L.

brevistylum Choisy

* hircinum L.

* perforatum L.

ICACINACEAE

Citronella

mucronata (R. et P.) D. Don

KRAMERIACEAE

Krameria

cistoidea H. et A.

iluca Phil.

LABIATAE

Cuminia

eriantha Benth.

fernandezia Colla

Glechoma

* hederacea L.

Kurzamra

pulchella (Clos) O.K.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA y M. QUEZADA

Lamiun

* amplexicaule L.

Lepechinia (Ver Sphacele)

Marrubium

* vulgare L.

Melissa

* officinalis L.

Mentha

* aquatica L.

* piperita L.

* pulegium L.

Prunella

* vulgaris L.

Salvia

gilliesii Benth.

paposana Phil.

rhombifolia R. et P.

tubiflora J.E. Sm.

Satureja

darwinii (Benth.). Briq.

gilliesii (Graham) Briq.

multiflora (R. et P.) Brig.

parvifolia (Phil.) Epling

Scutellaria

nummulariifolia Hook. f.

racemosa Pers.

valdiviana (Clos) Epling

Sphacele

chamaedryoides (Balbis) Brig.

salviae (Lindl.) Briq.

subhastata Benth.

Stachys

albicaulis Lindl.

bridgesii Benth.

eremicola Epling

gilliesii Benth.

grandidentata Lindl.

litoralis Phil.

macrael Benth.

pannosa Phil.

philippiana Vatke

sericea Cav.

truncata Kunze ex Benth.

49

Teucrium

bicolor J.E. Sm.

nudicaule Hook.

LACTORIDACEAE

Lactoris

fernandeziana Phil.

LARDIZABALACEAE

Boquila

trifoliolata (DC.) Dcne.

Lardizabala

biternata R. et P.

LAURACEAE

Beilschmiedia

berteroana (Gay) Kosterm.

miersii (Gay) Kosterm.

Cryptocarya

alba (Mol.) Looser

Persea

lingue (R. et P.) Nees ex Kopp

meyeniana Nees

LEDOCARPACEAE

Balbisia

microphylla (Phil.) Reiche

peduncularis (Lindl.) D. Don

stitchkinii Ricardi

Wendtia

gracilis Meyen

LENTIBULARIACEAE

Pinguicula

antarctica Vahl

chilensis Clos

Utricularia

gibba L. ssp. gibba

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

LINACEAE

Cliococca

selaginoides (Lam.) Rogers et Mildner

Linum

chamissonis Schiede var. chamissonis

var. obtusifolium (Phil.) Reiche

macraei Benth. var. macraei

var. cumingii (Lodd.) Urban

var. marticorenae Mildner

var. oligophyllum (H. et A.) Reiche

paposanum Phil.

ramosissimum Gay

* usitatissimum L.

LOASACEAE

Caiophora

contorta (Desr.) Urban et Gilg

coronata (Gill. ex Arn.) H. et A.

dissecta (Hook.) Urban et Gilg

espigneira (Gay) Urban et Gilg

macrocarpa Urban et Gilg

prietea (Gay) Urban et Gilg

rahmeri Phil.

rosulata (Wedd.) Urb. et Gilg

sepiaria (R. et P. ex G. Don) Macbr.

silvestris (Poepp.) Urban et Gilg var. silvestris

var. australis Urban et Gilg

var. mitis (Phil.) Urban et Gilg

superba Phil.

tomentosula Urban et Gilg

Loasa

acanthifolia Desr.

acaulis (Phil.) Urban et Gilg

acerifolia Domb. ex A.L. Juss.

acutiloba Urban et Gilg

alpina (Poepp.) Urban et Gilg

aphanantha Urban et Gilg

arnottiana Gay

bergii Hieron.

bertrandii Phil.

bridgesii Urban et Gilg

caespitosa Phil.

chilensis (Gay) Urban et Gilg

chillana Urban et Gilg

elongata H. et A.

filicifolia Poepp.

floribunda H. et A. var. floribunda

var. brachysepala Urban et Gilg

fruticosa (Phil.) Urban et Gilg

gayana Urban et Gilg

heterophylla H. et A.

humilis Phil.

illapelina Phil. var. illapelina

var. laciniata (Phil.) Urban et Gilg

intricata Gay

lateritia Gill. ex Arn.

longiseta Phil.

malesherbioides Phil.

martinil Phil.

micrantha Poepp.

multifida Gay

nana Phil.

pallida Gill. ex Arn.

paradoxa Urban et Gilg

patagonica Urban et Gilg

pinnatifida Gill. ex Arn.

poeppigiana Urban et Gilg

sagittata H. et A.

sclareifolia A.L. Juss. var. sclareifolia

var. brachycarpa Urban et Gilg

var. inermis Urban et Gilg

var. nemoralis (Phil.) Urban et Gilg

sessiliflora Phil.

sigmoidea Urban et Gilg

tricolor Ker-Gawl. var. tricolor

var. insons (Poepp.) Urban et Gilg

var. placei (Lindl.) Urban et Gilg

var. prostrata (Gill. ex Arn.) Urban et Gilg

triloba Domb. ex A.L. Juss.

tripartita Urban et Gilg

unguiculata Urban et Gilg

urens Jacq.

urmenetae Phil.

volubilis Domb. ex A.L. Juss.

Mentzelia

albescens (Gill. ex Arn.) Griseb.

bartonioides (K. Presl) Urban et Gilg

chilensis Gay var. chilensis

var. atacamensis Urban et Gilg

fendleriana Urban et Gilg

ignea (Phil.) Urban et Gilg

pinnatifida (Phil.) Urban et Gilg var. pinnatifida

solieri (Gay) Urban et Gilg

Scyphanthus

elegans D. Don

stenocarpus (Poepp.) Urban et Gilg

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

LORANTHACEAE

Desmaria

mutabilis (P. et E.) Van Tiegh. ex Jacks.

Eremolepis

punctulata (Clos) Griseb.

Lepidoceras

kingii Hook. f.

Ligaria

cuneifolia (R. et P.) Van Tiegh.

Notanthera

heterophylla (R. et P.) G. Don

Tristerix

aphyllus (Miers ex DC.) Van Tiegh. ex Barlow et

Wiens

tetrandrus (R. et P.) Mart.

verticillatus (R. et P.) Barlow et Wiens

LYTHRACEAE

Lythrum

* album H.B.K.

* hyssopifolia L.

* maritimum H.B.K.

Peplis

* portula L.

Pleurophora

polyandra H. et A. fma. polyandra

fma. squarrosa (Steud.) Koehne

pungens D. Don fma. pungens.

fma. imbricata Koehne

pusilla H. et A. fma. pusilla

fma. vestita Koehne

MALESHERBIACEAE

Malesherbia

auristipulata Ricardi

campanulata Ricardi

densiflora Phil.

deserticola Phil.

fasciculata D. Don var. fasciculata

var. glandulosa Ricardi

gabrielae Ricardi

humilis Poepp. var. humilis

var. parviflora (Phil.) Ricardi

51

var. propinqua (Gay) Ricardi

lactea Phil.

lanceolata Ricardi

linearifolia (Cav.) Pers.

lirana Gay var. lirana

var. bracteata (Phil.) Ricardi

var. subglabrifolia O.K.

multiflora Ricardi

obtusa Phil. var. obtusa

var. johnstonii (Werd.) Ricardi

paniculata D. Don

rugosa Gay var. rugosa

var. pseudopulverulenta Ricardi

taltalina Ricardi

tenuifolia D. Don

tocopillana Ricardi

MALPIGHIACEAE

Dinemagonum

bridgesianum A.H.L. Juss.

gayanum A.H.L. Juss.

maculigerum Phil.

Dinemandra

ericoides A.H.L. Juss.

glaberrima A.H.L. Juss.

MALVACEAE

Anoda

* hastata Cav.

Corynabutilon

bicolor (Phil. ex Schum.) Kearney

ceratocarpum (H. et A.) Kearney

ochseni (Phil.) Kearney

salicifolium (Reiche) Krap.

vitifolium (Cav.) Kearney

Cristaria

adenophora Johnst.

andicola Gay

argyliifolia Phil.

aspera Gay var. aspera

var. pilosa (Phil.) Reiche

australis Phil.

betonicifolia Pers.

bipinnatifida Phil.

carrizalensis Phil.

concinna Phil.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

cordato-rotundifolia Gay

cyanea Phil. ex E. Baker

diaziana Johnst.

dissecta H. et A.

divaricata Phil. ex E. Baker

diversifolia Phil. fma. diversifolia

fma. parvula (Phil.) Johnst.

elegans Gay

eriantha H. et A.

flexuosa Phil.

foliosa Phil.

formosula Johnst.

fuentesiana Johnst.

glabrata Phil.

glandulosa Phil.

glaucophylla Cav. var. glaucophylla

var. simplex Reiche

glomerulata Johnst.

grandidentata Phil. ex E. Baker

haenkeana K. Presl

heterophylla (Cav.) H. et A. var. heterophylla

var. loasifolia (Phil.) Reiche

hirsuta K. Presl

hispida Phil.

humilis Phil.

inconspicua F. Phil. ex Phil.

insularis F. Phil.

integerrima Phil.

intermedia Gay

intonsa Johnst.

johowii Skottsb.

leucantha Johnst.

lobulata Phil.

molinae Gay

multifida Cav.

multiflora Gay

ovallea Gay

oxyptera Phil.

pannosa Phil. ex Reiche

paposana Johnst.

patens Phil.

pinnata Phil.

pinnatifida H. et A.

ranunculifolia Phil. ex E. Baker

rotundifolia Phil.

sadae Phil.

saniculifolia Phil. ex E. Baker

spinolae Gay

sundtii Phil.

thinophila Johnst.

trichocaula Phil.

trifida Phil.

univittata Hochr.

52

urmenetae Phil.

viridi-luteola Gay var. viridi-luteola

var. geraniifolia (K. Presl) Reiche

virgata Gay

Gossypium

* barbadense L.

Lavatera

* assurgentiflora Kellogg

* thuringiaca L.

Malacothamnus

chilensis (Gay) Krap.

Malva

* moschata L.

* nicaensis All.

* parviflora L.

Malvastrum

* coromandelianum (L.) Garcke

Malvella

leprosa (Ort.) Krap.

Modiola

* caroliniana (L.) G. Don

Nototriche

alternata A.W. Hill

anthemidifolia (Remy) A.W. Hill

argentea A.W. Hill

auricoma (Phil.) A.W. Hill

borussica (Meyen ex Walp.) A.W. Hill

clandestina (Phil.). A.W. Hill

compacta (A. Gray) A.W. Hill

diminutiva (Phil.) Johnst.

estipulata A.W. Hill ex Burtt

hilli Krap.

holosericea A.W. Hill

leucosphaera A.W. Hill

longirostris (Wedd.) A.W. Hill

megalorrhiza (Phil.) A.W. Hill

meyenii Ulbr.

nana A.W. Hill

obcuneata (E. Baker) A.W. Hill var. obcuneata

var. cinerea A.W. Hill

orbignyana (Wedd.) A.W. Hill

parviflora (Phil.) A.W. Hill

pedicularifolia (Meyen) A.W. Hill

philippii A.W. Hill

pulverulenta Burtt et A.W. Hill

pulvinata A.W. Hill

pusilla A.W. Hill

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

pygmaea (Remy) A.W. Hill

rugosa (Phil.) A.W. Hill

sajamensis (Hieron.) A.W. Hill

sarmentosa A.W. Hill

turritella A.W. Hill

Palaua

concinna (Phil.) Johnst.

dissecta Benth.

inconspicua Johnst.

modesta (Phil.) Reiche

moschata Cav.

Sida

* paniculata L.

* spinosa L. var. spinosa

Sphaeralcea

obtusiloba (Hook.) G. Don

purpurata (Lindl.) Krap.

velutina K. Presl

Tarasa

albertii (Phil.) Reiche

antofagastana (Phil.) Krap.

congestiflora (Johnst.) Krap.

humilis (Gill. ex H. et A.) Krap.

operculata (Cav.) Krap.

reichei (Phil.) Krap.

tarapacana (Phil.) Krap.

tenella (Cav.) Krap.

umbellata Krap.

Thespesia

populnea (L.) Soland. ex J. Corréa

Urocarpidium

chilense (Braun et Bouché) Krap.

peruvianum (L.) Krap.

sanambrosianum Bates

MIMOSACEAE

Acacia

*

armata R. Br.

* aroma Gill. ex H. et A.

caven (Mol.) Mol.

dealbata Link

horrida (L.) Willd.

macracantha H. et B. ex Willd.

melanoxylon R. Br.

visco Lorentz ex Griseb.

XX E Y Y %

53

Albizzia

* lophantha (Willd.) Benth.

Calliandra

chilensis Benth.

Prosopis

alba Griseb. var. alba

burkartii Muñoz

chilensis (Mol.) Stuntz var. chilensis

flexuosa DC. var. flexuosa

strombulifera (Lam.) Benth.

tamarugo Phil.

MISODENDRACEAE

Misodendrum

angulatum Phil.

brachystachium DC.

gayanum Van Tiegh.

imbricatum P. et E.

linearifolium DC. var. linearifolium

var. contractum Skottsb.

macrolepis Phil.

oblongifolium DC.

punctulatum Banks ex DC.

quadriflorum DC.

MONIMIACEAE

Laurelia

philippiana Looser (9)

sempervirens (R. et P.) Tul.

Laureliopsis (Ver Laurelia)

Peumus

boldus Mol.

MORACEAE

Broussonetia

papyrifera Vent.

MYRICACEAE

Myrica

pavonis C. DC.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

MYRTACEAE

Amomyrtus

luma (Mol.) Legr. et Kaus.

meli (Phil.) Legr. et Kaus.

Blepharocalyx

cruckshanksii (H. et A.) Nied.

Legrandia

concinna (Phil.) Kausel

Luma

apiculata (DC.) Burret

chequen (Mol.) A. Gray

gayana (Barn.) Burret

Myrceugenella (Ver Luma)

Myrceugenia

chrysocarpa (Berg) Kausel

colchaguensis (Phil.) Navas

correifolia (H. et A.) Berg

exsucca (DC.) Berg

fernandeziana (H. et A.) Johow

lanceolata (Jaume) Kausel

leptospermoides (DC.) Kausel

obtusa (DC.) Berg

ovata (H. et A.) Berg var. ovata

var. nannophylla (Burret) Landrum

parvifolia (DC.) Kausel

pinifolia (F. Phil.) Kausel

planipes (H. et A.) Berg

rufa (Colla) Skottsb. ex Kausel

schulzei Johow

Myrteola

leucomyrtillus (Griseb.) Reiche

nummularia (Poir.) Berg var. nummularia

var. barneoudii (Berg) Kausel

Nothomyrcia (Ver Myrceugen:a)

Reichea

coquimbensis (Barn.) Kausel

Temu (Ver Blepharocalyx)

Tepualia

stipularis (H. et A.) Griseb.

Ugni

candollei (Barn.) Berg

molinae Turcz.

selkirkii (H. et A.) Berg

NOLANACEAE (10)

Alona

balsamiflua Gaud.

carnosa Lindl.

coelestis Lindl.

filifolia (H. et A.) Johnst.

rostrata Lindl.

stenophylla (Johnst.) Johnst.

Nolana

acuminata (Miers) Miers ex Dunal

albescens (Phil.) Johnst.

aplocaryoides (Gaud.) Johnst.

baccata (Lindl.) Dunal

clivicola (Johnst.) Johnst.

crassulifolia Poepp.

deflexa (Johnst.) Johnst.

diffusa Johnst.

divaricata (Lindl.) Johnst.

elegans (Phil.) Reiche

flaccida (Phil.) Johnst.

foliosa (Phil.) Johnst.

glauca (Johnst.) Johnst.

gracillima Johnst.

incana (Phil.) Johnst.

inconspicua (Johnst.) Johnst.

jaffuelii Johnst.

leptophylla (Miers) Johnst.

linearifolia Phil.

lycioides Johnst.

mollis (Phil.) Johnst.

paradoxa Lindl.

parviflora (Phil.) Phil.

peruviana (Gaud.) Johnst.

polymorpha Gaud.

pterocarpa Phil. ex Wettst.

ramosissima Johnst.

rhombifolia Martic. et Quez.

rupicola Gaud.

salsoloides (Lindl.) Johnst.

sedifolia Poepp.

sessiliflora Phil.

tarapacana (Phil.) Johnst.

tocopillensis (Johnst.) Johnst.

villosa (Phil.) Johnst.

werdermannii Johnst.

NYCTAGINACEAE

Allionia

incarnata L.

54

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Boerhavia

diffusa L.

erecta L.

Oxybaphus

cordifolius Kunze ex Choisy

elegans Choisy

micranthus Choisy

ovatus (R. et P.) Vahl var. ovatus

var. acutus Reiche

NYMPHAEACEAE

Nymphaea

* alba L.

OLEACEAE

Menodora

linoides Phil.

ONAGRACEAE

Boisduvalia

subulata (R. et P.) Raimann

Camissonia

dentata (Cav.) Reiche ssp. dentata

ssp. littoralis Raven et D.M. Moore

Clarkia

tenella (Cav.) Lewis et Lewis ssp. tenella

ssp. ambigua (Phil.) D.M. Moore et Lewis

ssp. araucana D.M. Moore et Lewis

ssp. tenuifolia (Cav.) D.M. Moore et Lewis

Epilobium

australe Poepp. et Hausskn. ex Hausskn.

barbeyanum Lév.

ciliatum Rafin. ssp. ciliatum

conjungens Skottsb.

densifolium Hausskn.

denticulatum R. et P.

fragile Samuels.

glaucum Phil.

nivale Meyen

* obscurum Schreb.

puberulum H. et A.

*

tetragonum L. ssp. lamyi (F. Schultz) Nyman .

55

Fuchsia

lycioides Andr.

magellanica Lam. var. magellanica

var. eburnea Pisano

var. macrostema (R. et P.) Munz

Gayophytum

humile A.H.L. Juss.

micranthum H. et A.

Ludwigia

octovalvis (Jacq.) Raven

peploides (H.B.K.) Raven ssp. montevidensis

(Spreng.) Raven

Oenothera

acaulis Cav.

affinis Cambess.

arequipensis Munz et Johnst.

coquimbensis Gay

erythrosepala Borbás

grisea W. Dietr.

magellanica Phil.

nana Griseb.

odorata Jacq.

peruana W. Dietr.

picensis Phil. ssp. picensis

raveniil W. Dietr. ssp. chilensis W. Dietr.

* rosea L'Hérit. ex Aiton

rubida Rusby

sandiana Hassk.

stricta Ledeb. ex Link ssp. stricta

villaricae W. Dietr.

*

OROBANCHACEAE

Orobanche

chilensis (Phil.) Beck

* minor J.E. Sm.

tarapacana Phil.

OXALIDACEAE

Oxalis

aberrans Reiche

adenocaulos Phil.

adenophylla Gill. ex H. et A.

alfalfalis Phil.

andicola Gill. ex H. et A.

araucana Reiche

arbuscula Barn.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

*

arenaria Bert. ex Savi

articulata Savigny

atacamensis Reiche

aureoflava Steud.

berningeri Knuth

berteroana Barn.

biglandulosa Steud.

borchersii Phil.

breana Phil.

briquetii Knuth

bryoides Phil.

bulbocastanum Phil.

caesia Phil.

carnosa Mol. var. carnosa

var. incana Reiche

cernua Thunb.

chaetocalyx Phil.

chilensis Knuth

cinerea Zucc.

clandestina Phil.

compacta Gill. ex H. et A.

coquimbana Phil.

corniculata L.

cumingii Hook.

cunninghamii Knuth

darapskyi Phil. ex Reiche

deflexa Poepp. ex Prog.

delicatula Phil.

dichotomiflora Steud.

dumetorum Barn.

enneaphylla Cav.

eremobia Phil.

ericoides Knuth

erythrorrhiza Gill. ex H. et A.

exigua Phil.

fluehmannii Phil.

fruticula Phil.

gaudichaudii Barn.

geminata H. et A.

geranioides Knuth

gigantea Barn.

gilliesii Phil.

glutinosa Phil.

gracilinervosa Knuth

guessfeldtii Knuth

gyrorhiza Bert. ex Savi

hapalconidea Barn.

hirthii Phil.

holosericea Phil.

hyalinorhiza Poepp. ex Knuth

hypsophila Phil.

illapelina Phil.

incana Phil.

56

*

inesitae Phil.

johnstonii Knuth

josephii Knuth

laciniata Cav.

landbeckii Phil.

laxa H. et A. var. laxa

var. hispidissima Barn.

var. major Knuth

var. minor Barn.

var. rigida Barn.

var. violacea Knuth

leptocaulos Phil.

leucophylla Phil.

lineata Gill. ex H. et A.

macropus Phil.

macrorrhiza Gill. ex H. et A.

magellanica G. Forster

mallobolva Cav.

maritima Barn.

micrantha Bert. ex Savi var. micrantha

var. alsinoides (Walp.) Knuth

var. purpurea Knuth

var. setifera Knuth

modesta Phil.

muscoides Phil.

nahuelhuapiensis Speg.

niveiphylla Knuth

ornata Phil.

ornithopus Phil.

ovalleana Phil.

pachyphylla Phil.

paniculata Reiche

paposana Phil. var. paposana

var. hirta Knuth

parvifolia DC.

patagonica Speg.

pearcel Phil.

penicillata Phil.

peraltae Phil.

philippiú Knuth

platypila Gill. ex H. et A.

polyantha Walp.

puberula Phil.

pubescens H.B.K.

pycnophylla Wedd.

radicans R. et P. ex Knuth

reichei Knuth

rosea Jacq.

spodiophylla Walp. var. spodiophylla

var. microphylla Walp.

squamata Zucc.

squamoso-radicosa Steud.

squarrosa Barn.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

steudeliana Knuth

strictula Steud.

subacaulis Gill. ex H. et A.

subcarnosa Klotzsch ex Walp.

succulenta Barn.

tarapacana Phil.

thyrsoidea Reiche

tolguacensis Knuth

torcana Phil.

tortuosa Lindl.

uspallatensis Knuth

valdiviensis Barn.

* zonata Liebm.

PAPAVERACEAE

Argemone

crassifolia Ownbey

hunnemannii Otto et Dietr.

rosea Hook.

subfusiformis Ownbey ssp. subfusiformis

Eschscholzia

* californica Cham.

PAPILIONACEAE

Adesmia

aegiceras Phil.

aphylla Clos

arachnipes Clos

araucana Phil.

arborea Bert. ex Savi

argentea Meyen

argyrophylla Phil.

aromatica Burk.

aspera Gill. ex H. et A.

atacamensis Phil.

aurantiaca (Dusén) Burk.

balsamica Bert. ex Savi

bedwellii Skottsb.

bicolor (Poir.) DC.

bijuga Phil.

boronioides Hook. f.

brachysemeon Phil.

bracteata H. et A.

brevivexillata Burk.

burkartii Correa

calycicomosa Burk.

campestris (Rendle) Rowlee

canescens Phil.

DU

capitellata (Clos) Haum.

codonocalyx Grandj.

colinensis (Phil. ex Reiche) This.-Dyer

concinna Phil.

conferta H. et A.

coquimbensis Burk.

corymbosa Clos

curvifolia Clos

darapskyana Phil. ex Reiche

davilae Phil.

denticulata Clos

denudata Phil.

dessaueri Phil. ex Reiche

diaziana Johnst.

dichotoma Clos

disperma Phil.

dumosa Phil.

echinus K. Presl

elata Clos

elegans Clos

emarginata Clos

eremophila Phil.

erinacea Phil.

exilis Clos

filicaulis Phil.

filifolia Clos

frigida Phil.

fuentesii Grand).

germainii Phil.

glandulifera Johnst.

glauca Phil.

glaucescens Phil.

glomerula Clos var. glomerula

var. australior Burk.

glutinosa H. et A.

godoyae Phil. ex Reiche

gracilis Meyen ex Vogel

gracillima Johnst.

hirsuta Phil.

horrida Gill. ex H. et A.

hystrix Phil.

inconspicua Phil.

intricata Phil. ex Reiche

jilesiana Burk.

kingii Phil.

lanata Hook. f.

landbeckii Phil.

laxa Clos

leiocarpa H. et A.

leucopogon Phil.

littoralis Burk.

longipes Phil.

longiseta DC.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

lotoides Hook. f.

loudonia H. et A.

medinae (Reiche) Ulib.

melanocaulos Phil.

melanthes Phil.

micrantha Phil.

microcalyx Phil. var. microcalyx

var. calvescens Burk.

microphylla H. et A.

monosperma Clos

montana Phil.

mucronata H. et A.

multicuspis Clos

muricata (Jacq.) DC.

obcordata Clos

obovata Clos

obscura Clos

occulta (R.E. Fries) Burk.

odontophylla Phil.

papposa (Lag.) DC. var. papposa

var. radicifolia (Clos) Correa

parviflora Clos

parvifolia Phil.

pearcei Phil.

pedicellata H. et A.

pentaphylla Phil.

peraltae Phil. ex Reiche

phylloidea Clos

pirionii Johnst.

polyphylla Phil.

propinqua Clos

prostrata Clos var. prostrata

var. eglandulosa Burk.

pumila Hook. f.

pungens Clos

pusilla Phil.

quadrijuga Phil.

rahmeri Phil.

ramosissima Phil.

reclinata Muñoz

remyana Phil.

renjifoana Phil.

resinosa Phil. ex Reiche

retusa Griseb.

rubroviridis Burk.

salicornioides Speg.

schneideri Phil.

sentis Phil.

sessiliflora Phil.

spinosissima Meyen ex Vogel

spuma Werd. ex Burk.

subterranea Clos

subumbellata Phil.

58

suffocata Hook. f.

tenella H. et A. var. tenella

var. macrocarpa Ulib.

var. misera (Phil.) Skottsb.

tomentosa Meyen

torcae Phil.

trijuga Gill. ex H. et A.

trifoliata Phil.

uspallatensis Gill. ex H. et A.

verrucosa Meyen

villanuevae Phil.

villosa Hook. f.

virens Phil.

viscida Bert. ex Savi

viscosa Gill. ex H. et A.

volckmannii Phil.

zoellneri Ulib.

Anarthrophyllum

andicola (Gill. ex H. et A.) F. Phil.

cumingii (H. et A.) F. Phil.

desideratum (DC.) Benth. var. desideratum

var. morenonis (O.K.) Speg.

gayanum (A. Gray) Jacks.

rigidum (Gill. ex H. et A.) Hieron.

Astragalus

amatus Clos

arequipensis Vogel

arnottianus (Gill. ex H. et A.) Reiche

bellus (O.K.) R.E. Fries

berteri Colla ex Savi

berterianus (Moris) Reiche

bustillosii Clos

cachinalensis Phil.

chamissonis (Vogel) Reiche

confinis Johnst.

coquimbensis (H. et A.) Reiche

cruckshanksii (H. et A.) Griseb.

cryptanthus Wedd.

cryptobotrys Johnst.

curvicaulis (Clos) Reiche

darumbium (Bert. ex Savi) Clos

dodtii Phil.

domeykoanus (Phil.) Reiche

edmonstonei (Hook.) B.L. Rob.

germainii Phil.

limariensis Muñoz

looseri Johnst.

magellanicus Gómez-Sosa

micranthellus Wedd.

minimus Vogel

minutissimus Wedd.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

monteroi Johnst.

monticola Phil.

nivicola Gómez-Sosa

nudus Clos

orthocarpus Johnst.

palenae (Phil.) Reiche var. palenae

paposanus Johnst.

patagonicus (Phil.) Speg.

pehuenches Niederl.

pissisii (Phil.) Johnst.

pusillus Vogel

reichei Speg.

schinetorum Barneby

triflorus (DC.) A. Gray

vagus (Clos) Reiche

valerianensis Johnst.

valparadisiensis Speg.

verticillatus (Phil.) Reiche

vesiculosus Clos

werdermannii Johnst.

Crotalaria

* incana L.

* saltiana Andr.

Cytisus (Ver también Telme)

* scoparius (L.) Link

* striatus (J. Hill) Rothm.

Dalea

azurea (Phil.) Reiche

moquehuana Macbr.

pennellii (Macbr.) Macbr.

Desmodium

* subsericeum Malme

Dolichos

* lignosus L.

Errazurizia

multifoliolata (Clos) Johnst.

Galega

* officinalis L.

Geoffroea

decorticans (Gill. ex H. et A.) Burk.

Glycyrrhiza

astragalina Gill. ex H. et A.

Hosackia (Ver Lotus)

Indigofera

* suffruticosa Mill.

Lathyrus

*

X* xXx

*

berterianus Colla ex Savi

cabrerianus Burk.

campestris Phil.

cicera L.

crassipes Gill. ex H. et A.

hirsutus L.

japonicus Willd. var. japonicus

var. aleuticus (Greene) Fern.

lomanus Johnst.

macropus Gill. ex H. et A.

magellanicus Lam. var. magellanicus

var. glaucescens Speg.

var. longipes (Phil.) Burk.

multiceps Clos

nervosus Lam.

pubescens H. et A.

sativus L.

sericeus Colla, non Lam. (11)

subandinus Phil.

Lotus

*

corniculatus L.

subpinnatus Lag.

tenuis Waldst. et Kit. ex Willd.

uliginosus Schkuhr

Lupinus

ananeanus Ulbr.

* arboreus Sims

*

chilensis C.P. Sm.

microcarpus Sims

oreophilus Phil.

polyphyllus Lindl.

tarapacensis C.P. Sm.

Medicago

* arabica (L.) Hudson

* arborea L.

* lupulina L.

* minima (L.) Bartal.

* orbicularis (L.) Bartal.

* polymorpha L. var. polymorpha

* sativa L.

*

turbinata (L.) All.

Melilotus

E Y XX %

alba Desr.

altissima Thuill.

indica (L.) All.

officinalis (L.) Lam.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Ornithopus

* compressus L.

* sativus Brot.

Psoralea

glandulosa L.

Rhynchosia

* minima (L.) DC.

Sarothamnus (Ver Cyl1sus)

Sophora

fernandeziana (Phil.) Skottsb. var. fernandeziana

var. reedeana (Phil.) Skottsb.

macrocarpa J.E.Sm.

masafuerana (Phil.) Skottsb.

microphylla Aiton

toromiro (Phil.) Skottsb.

Spartium

* junceum L.

Teline

* monspessulana (L.) K. Koch

Trifolium

amphicarpum Phil.

* angustifolium L.

* arvense L.

brevipes Phil.

* campestre Schreb.

chilense H. et A.

concinnum Phil.

crosnieri Clos

densiflorum Phil.

depauperatum A.N. Desv.

* dubium Sibth.

* fragiferum L. ssp. bonannii (J. et K. Presl) Soják

* glomeratum L.

* hybridum L.

* incarnatum L.

indecorum Clos

* involucratum Willd.

macraei H. et A.

microdon H. et A.

physanthum H. et A.

* polymorphum Poir. var. polymorphum

var. grandiflorum Parodi

* pratense L.

* repens L.

rivale Clos

60

*

simplex Clos

spadiceum L.

striatum L.

suffocatum L.

tomentosum L.

triaristatum Bert. ex Savi

vernum Phil.

XX XX X +

Trigonella

* monspeliaca L.

Ulex

* europaeus L.

Vicia

acerosa Clos

andina Phil.

araucana Phil.

* articulata Hornem.

benghalensis L.

berteroana Phil.

bijuga Gill. ex H. et A.

ciliaris Phil.

diversifolia Phil.

graminea J.E. Sm.

grata Phil.

heterophylla Phil.

hirsuta (L.) S.F. Gray

inconspicua Phil.

lanceolata Phil.

leyboldii Phil.

linearifolia H. et A.

magellanica Hook. f. var. magellanica

var. andicola (Phil.) Reiche

var. dianthes (Phil.) Reiche

magnifolia Clos

micrantha H. et A.

modesta Phil.

moorei Phil.

mucronata Clos

nana Vogel

nigricans H. et A.

pallida H. et A.

sativa L.

sessiliflora Clos

speciosa Phil.

subserrata Phil.

tenuissima (Bieb.) Schinz et Thell.

tetrasperma (L.) Schreb.

truncata Phil.

vicina Clos

villosa Roth

*

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

PASSIFLORACEAE

Passiflora

foetida L.

pinnatistipula Cav.

PHYTOLACCACEAE

Anisomeria

coriacea D. Don

littoralis (P. et E.) Moq.

Ercilla

syncarpellata Nowicke

volubilis A.H.L. Juss.

Phytolacca

bogotensis H.B.K.

PIPERACEAE

Peperomia

berteroana Mig.

coquimbensis Skottsb.

doellii Phil.

fernandeziana Mig. fma. fernandeziana

fma. oblongifolia Skottsb.

margaritifera Bert. ex Hook. var. margaritifera

var. umbraticola Skottsb. ex Yuncker, sin

descr. latina

nummularioides Griseb.

skottsbergii C. DC. ex Skottsb.

PLANTAGINACEAE

Littorella

australis Griseb. ex Skottsb.

Plantago

australis Lam. ssp. australis

ssp. cumingiana (Fisch. et Mey.) Rahn

barbata G. Forster var. barbata

var. caespitosa (Phil.) Pilger

var. pauciflora (Hook. f.) Pilger subvar. pau-

ciflora

subvar. uncialis (Dcne.) Pilger fma. un-

cialis

fma. minor Pilger

var. puberula Pilger

brasiliensis Sims var. chilensis (Rapin) Pilger

var. decaisnel (Barn.) Pilger

var. gayana (Dcne.) Pilger

61

var. lasiothrix (Kunze ex Dcene.) Pilger

var. obtusata (Dcne.) Pilger

*

coronopus L.

fernandezia Bert. ex Barn.

firma Kunze ex Walp.

grandiflora Meyen var. grandiflora

var. hirsuta (Phil.) Pilger

hispidula R. et P. var. hispidula

var. tumida (Link) Pilger

*

lanceolata L.

litorea Phil. var. litorea

var. pseudopatagonica (Vatke) Pilger

lundborgii Sparre

major L.

maritima L.

monticola Dcne.

pachyneura Steud.

rancaguae Phil.

sempervivoides Dusén

tacnensis Pilger

tehuelcha Speg.

truncata Cham. et Schlecht.

tubulosa Dcne.

uniglumis Wallr. ex Walp. var. uniglumis

var. brevicuspis Pilger

var. Ooxyphylla (Speg.) Pilger

+

PLUMBAGINACEAE

Armeria

maritima (Mill.) Willd. ssp. andina (Poepp. ex

Boiss.) D.M. Moore et Yates

Limonium

guaicuru (Mol.) O.K.

plumosum (Phil.) O.K.

Plumbago

coerulea H.B.K.

POLEMONIACEAE

Collomia

biflora (R. et P.) Brand

cavanillesii H. et A.

Gilia

crassifolia Benth.

glutinosa Phil.

laciniata R. et P.

valdiviensis Griseb.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Ipomopsis

gossypifera (Gill. ex Benth.) Grant

Linanthus

pusillus (Benth.) Greene

Microsteris

gracilis (Dougl. ex Hook.) Greene

Navarretia

involucrata R. et P.

Polemonium

micranthum Benth.

POLYGALACEAE

Monnina

angustifolia DC.

linearifolia R. et P.

pterocarpa R. et P.

retusa K. Presl

Polygala

gayi A. Benn.

gnidioides Willd.

persistens A. Benn.

pratensis Phil.

salasiana Gay

solieri Gay

subandina Phil.

thesioides Willd.

POLYGONACEAE

Bilderdykia

* convolvulus (L.) Dum.

Chorizanthe

commisuralis Remy

dasyantha Phil.

densa Phil.

deserticola Phil.

fasciculata Phil.

flavescens Phil.

frankenioides Remy

glabrescens Benth.

humilis Phil.

illapelina Phil.

intricata Phil.

kingil Phil.

macraei Benth. var. macraei

62

var. humilis Benth.

membranacea Benth.

paniculata Benth.

parviflora Phil.

pauciflora Phil.

peduncularis Benth.

ramosissima Benth.

rosea Phil.

tenuis Phil.

umbellata Phil.

vaginata Benth. var. vaginata

var. arida Remy

var. maritima Remy

virgata Benth. var. virgata

var. tomentosa Benth.

viridis Phil.

Koenigia

*

islandica L.

Lastarriaea

chilensis Remy

Muehlenbeckia

hastulata (J.E. Sm.) Johnst.

Oxytheca

dendroidea Nutt. subsp. chilensis (Remy) Ertter

Polygonum

*

XX XX EX XX XX *

arenastrum Boreau

aviculare L.

berteroi Phil.

chiloensis Rech. f.

hydropiperoides Michx.

lapathifolium L.

maritimum L.

mite Schrank

orientale L.

persicaria L.

sanguinaria Remy

Rumex

*

acetosa L.

acetosella L.

chrysocarpus Moris

conglomeratus Murr.

crispissimus O.K.

crispus L.

cuneifolius Campd. var. cuneifolius

var. maricola (Remy) Rech. f.

foliosus Rech. f.

magellanicus Campd.

maritimus L. ssp. fueginus (Phil.) Hultén

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

* obtusifolius L.

patagonicus Rech. f.

* pulcher L.

romassa Remy

* sanguineus L.

PORTULACACEAE

Calandrinia

acaulis H.B.K.

acuminata Phil.

affinis Gill. ex Arn.

andicola Gill. ex H. et A.

arenaria Cham. var. arenaria

var. chamissoi (Barn.) Reiche

var. subverticillata (Phil.) Reiche

var. vicina (Phil.) Reiche

bandurriae Phil.

barneoudii Phil.

berteroana Phil.

cachinalensis Phil.

caespitosa Gill. ex Arn. var. caespitosa

calocephala Phil.

calycina Phil.

capitata H. et A. var. capitata

var. prolifera (Phil.) Reiche

capituligera Phil.

cephalophora Johnst.

chrysantha Johnst.

ciliata (R. et P.) DC.

cistiflora Gill. ex Arn.

colchaguensis Barn.

compacta Barn.

compressa Schrad. ex DC.

conferta Gill. ex Arn.

copiapina Phil.

coquimbensis Barn.

cumingii H. et A.

cymosa Phil.

demissa Phil.

dianthoides Phil.

diffusa Gill. ex Arn.

discolor Schrad.

fasciculata Phil.

fenzlii Barn.

ferruginea Barn.

frigida Barn.

gayana Barn.

gilliesii H. et A.

glaucopurpurea Reiche

glomerata Phil.

graminifolia Phil.

63

grandiflora Lindl.

hirtella Phil.

lamprosperma Johnst.

leucocephala Phil.

litoralis Phil.

longiscapa Barn.

minutissima Barn.

modesta Phil.

oblongifolia Barn. var. oblongifolia

var. humilis (Phil.) Reiche

occulta Phil.

picta Gill. ex Arn.

polia Phil.

polycarpoides Phil.

prostrata Phil.

ramosissima H. et A.

salsoloides Barn.

saltensis Haum.

sericea H. et A.

sitiens Johnst.

solisii Phil.

spicata Phil.

spicigera Phil.

splendens Barn.

stricta Phil.

taltalensis Johnst.

thyrsoidea Reiche

tricolor Phil.

trifida H. et A.

umbellata (R. et P.) DC.

villanuevae Phil.

villarroelii Phil.

Lenzia

chamaepitys Phil.

Monocosmia

monandra (R. et P.) Baillon

Montia

fontana L. ssp. fontana

ssp. chondrosperma (Fenzl) Walters

Philippiamra

amaranthoides (Phil.) O.K.

celosioides (Phil.) O.K.

fastigiata (Phil.) Pax et K. Hoffm.

pachyphylla (Phil.) O.K.

Portulaca

* oleracea L.

philippii Johnst.

Silvaea (Ver Philippiamra)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

PRIMULACEAE RANUNCULACEAE

Anagallis Anemone

alternifolia Cav. var. alternifolia antucensis Poepp.

var. angustifolia Phil. decapetala Ard. var. decapetala

var. minor Knuth var. foliolosa Eichler

var. repens (D'Urv.) Knuth hepaticifolia Hook.

var. tenelliformis Knuth fma. laxa Knuth moorei Esp.

* arvensis L. multifida Poir.

minima (L.) Krause rigida Gay

Androsace Barneoudia

salasii Kurtz balliana Britton

chilensis Gay

Ver A ll

Centunculus (Ver Anagallas) jo niBhil acia jos

Lysimachia Cia

sertulata Baudo ;

appendiculata Pers.

Pelletiera dioneifolia Hook. f.

verna St.-Hil. sagittata Cav.

Primula Clematis

magellanica Lehm. * denticulata Vell.

Samolus Hamadryas

latifolius Duby delfinii Phil. ex Reiche

repens (J.R. et G. Forster) Pers. kingii Hook. f.

spathulatus (Cav.) Duby magellanica Lam.

* valerandi L. sempervivoides Sprague

Myosurus

apetalus Gay

PROTEACEAE patagonicus Speg.

Embothrium Ranunculus

acaulis Banks et Soland. ex DC.

coccineum J.R. et G. Forster EE

apiifolius Pers.

Gevuina aquatilis L.

avellana Mol. biternatus J.E. Sm.

a bonariensis Poir. var. trisepalus (Gill. ex H. et A.)

Lomatia

Lourt.

dentata (R. et P.) R.Br. caprarum Skottsb.

ferruginea (Cav.) R.Br. chilensis DC.

hirsuta (Lam.) Diels ex Macbr. cymbalaria Pursh fma. cymbalaria

Orites fma. exilis (Phil.) Lourt.

flagelliformis J.E. Sm.

fuegianus Speg.

hydrophilus Gaud.

maclovianus D'Urv

minutiflorus Bert. ex Phil.

RAFFLESIACEAE * muricatus L.

parviflorus L.

peduncularis J.E. Sm. var. peduncularis

berteroi Guill. var. erodiifolius (Gay) Reiche

myrtoidea (P. et E.) B. et H. ex Sleumer

*

Pilostyles

64

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

pseudotrullifolius Skottsb. Rhamnus

* repens L. var. repens

var. flore-pleno DC.

semiverticillatus Phil. Talguenea

sericocephalus Hook. f. quinquenervia (Gill. et Hook.) Johnst.

trullifolius Hook. f.

uniflorus Phil. ex Reiche fma. uniflorus

fma. bolivianus (Phil.) Lourt. campanulata (Phil.) Reiche

closiana Miers

glauca (Phil.) Reiche

spinifer (Clos) Escal.

diffusus Clos

Trevoa

RESEDACEAE trinervis Miers

Reseda

* luteola L. ROSACEAE

* odorata L. AE

alpina Poepp. ex Walp.

andina Phil.

antarctica Hook. f.

argentea R. et P.

caespitosa Gill. ex H. et A.

RHAMNACEAE

Chacaya (Ver Discaria)

Colletia digitata Phil.

ferox Gill. et Hook. var. ferox leptacantha Phil.

var. dumosa (Miers) Suess. lucida (Lam.) Vahl

var. infausta (N.E.Br.) Suess. macrocephala Poepp.

var. invicta (Miers) Reiche magellanica (Lam.) Vahl

var. veprecula (Miers) Suess. masafuerana Bitter

hystrix Clos var. hystrix ovalifolia R. et P.

var. brevispina (Phil.) Reiche pinnatifida R. et P.

spartioides Bert. ex Savi platyacantha Speg.

spinosa Lam. var. spinosa poeppigiana Gay

var. armata (Miers) Reiche pumila Vahl

var. cataphracta (Miers) Reiche sericea Jacq. f.

var. miersii Suess. splendens H. et A.

var. pungens (Miers) Reiche fma. pungens tenera Alboff

fma. tomentosa (Phil.) Suess. trifida R. et P. var. trifida

ulicina Gill. et Hook. var. quinquefida (Phil.) Reiche

Condalia (12) Alchemilla (Ver Aphanes y Lachemilla)

microphylla Cav. Aphanes

* arvensis L.

Dascaria berteroana Rothm. fma. berteroana

articulata (Phil.) Miers fma. vegeta Rothm.

chacaye (G. Don) Tort. looseri (Rothm.) Rothm.

nana (Clos) B. et H. ex Weberb.

serratifolia (Vent.) B. et H. ex Masters Duchesnea

trinervis (Gill. ex H. et A.) Reiche * indica (Andr.) Focke

Retanilla Fragaria

ephedra (Vent.) Brongn. var. ephedra chiloensis (L.) Duch. ssp. chiloensis fma. chi-

var. crassa (Phil.) Reiche loensis

stricta H. et A. fma. patagonica Staudt

65

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Geum

andicola (Phil.) Reiche

involucratum Pers.

magellanicum Pers.

quellyon Sweet

Kageneckia

angustifolia D. Don

oblonga R. et P.

Lachemilla

diplophylla (Diels) Rothm.

pinnata (R. et P.) Rothm.

sandiensis (Pilger) Rothm.

x Margyracaena

skottsbergil Bitter

Margyricarpus

digynus (Bitter) Skottsb.

pinnatus (Lam.) O.K.

Polylepis

besseri Hieron.

tarapacana Phil.

Potentilla

* anserina L.

Quillaja

saponaria Mol.

Rosa

* canina L.

* moschata Herrm.

* rubiginosa L.

Rubus

* constrictus Muell. et Lef.

geoides J.E. Sm.

* ulmifolius Schott

Sanguisorba

* minor Scop.

* officinalis L.

Tetraglochin

acanthocarpum (Speg.) Speg.

alatum (Gill. ex H. et A.) O.K.

cristatum (Britton) Rothm.

66

RUBIACEAE

Coprosma

oliveri Fosberg

pyrifolia (H. et A.) Skottsb.

Cruckshanksia

capitata Phil.

hymenodon H. et A. var. hymenodon

var. bustillosii (Phil.) Ric. et Quez.

lithiophila Ricardi

montiana Clos

pumila Clos

tripartita Phil.

verticillata Phil

Galium

*

antarcticum Hook. f.

aparine L.

araucanum Phil.

cotinoides Cham. et Schlecht.

diffusoramosum Dempst. et Ehrend.

divaricatum Pour. ex Lam.

eriocarpum Bartl. ex DC.

fuegianum Hook. f.

gilliesii H. et A. ssp. gilliesil

ssp. telanthos (Phil.) Dempst.

inconspicuum Phil.

leptum Phil.

magellanicum Hook. f.

masafueranum Skottsb.

murale (L.) All.

ovalleanum Phil.

parisiense L.

philippianum Dempst.

reynoldsii Dempst.

suffruticosum H. et A.

trichocarpum DC.

tricornutum Dandy

werdermannii Standl.

Hedyotis

salzmannii (DC.) Steud.

Leptostigma

arnottianum Walp.

Nertera

granadensis (Mutis ex L.f.) Druce

Oldenlandia (Ver Hedyotis)

Oreopolus

glacialis (P. et E.) Ricardi var. glacialis

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

macranthus (Phil.) Ricardi Santalum

palmae (Clos) Ricardi fernandezianum F. Phil.

Relbunium

croceum (R. et P.) Schum. ssp. croceum

ssp. involucratum (H.B.K.) Ehrend.

hypocarpium (L.) Hemsl. ssp. hypocarpium Bridgesia

ssp. grandifolium Ehrend.

ssp. nitidum (H.B.K.) Ehrend.

SAPINDACEAE

incisifolia Bert. ex Cambess.

Rubia Dodonaea

* tinctorum L. viscosa (L.) Jacq.

Sherardia Guindilia

E E trinervis Gill. ex H. et A.

arvensis L.

Llagunoa

glandulosa (H. et A.) G. Don

RUTACEAE Sapindus

Fagara saponaria L.

externa Skottsb. Valenzuelia (Ver Guindilia)

mayu (Bert. ex Savi) Engler

Pitavia

punctata Mol. SAPOTACEAE

Ruta Lucuma (Ver Pouteria)

* chalepensis L. Pontera

* graveolens L.

splendens (A. DC.) O.K.

SALICACEAE SAXIFRAGACEAE

Salix Chrysosplenium

humboldtiana Willd. macranthum Hook.

valdivicum Hook.

Escallonia

SANTALACEAE alpina Poepp. ex DC. var. alpina

Arjona var carmelitana (Meyen) Acev. et Kaus.

Ñ var. glabrata (Phil.) Sleumer

o o angustifolia K. Presl. var. angustifolia

pusilla Hook. f. var. coquimbensis (Remy) Acev. et Kaus.

ES callcottiae H. et A.

Myoschilos florida Poepp. ex DC.

gayana Acev. et Kaus.

Ret.P.

oblonga R. e illinita K. Presl var. illinita

Nanodea var. pubicalycina Briq.

muscosa Banks ex C. Gaertn. leucantha Remy

myrtoidea Bert. ex DC.

Quinchamalium (15) pulverulenta (R. et P.) Pers. var. pulverulenta

chilense Mol. var. glabra Engler

excrescens Phil. revoluta (R. et P.) Pers.

67

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

rosea Griseb.

rubra (R. et P.) Pers. var. rubra

var. dumetorum (Phil.) Acev. et Kaus.

var. glutinosa (Phil.) Reiche

var. macrantha (H. et A.) Reiche

var. thalassica Kausel

serrata J.E. Sm.

virgata (R. et P.) Pers.

Escallonia (híbridos)

alpina var. alpina x rubra var. rubra

alpina var. alpina x virgata

alpina var. carmelitana x rubra var. rubra

myrtoidea x illinita

revoluta x leucantha

revoluta x myrtoidea

rosea x alpina var. alpina

rosea x rubra var. rubra

rubra var. rubra x illinita

rubra var. rubra x leucantha

virgata x leucantha

virgata x rubra var. rubra

Francoa

appendiculata Cav. var. appendiculata

var. ramosa (D. Don) Rolfe

var. sonchifolia (Cav.) Rolfe

Lepuropetalon

spathulatum (Munhl.) Elliott

Ribes

bicolor Phil.

cucullatum H. et A. var. cucullatum

var. densiflorum (Phil.) Sparre

cuneifolium R. et P.

gayanum (Spach) Reiche

integrifolium Phil.

magellanicum Poir. ssp. magellanicum

ssp. parviflorum (Phil.) Sparre

nemorosum Phil.

nitidissimum Neger

nubigenum Phil.

ovallei Phil.

parvifolium Phil.

polyanthes Phil.

punctatum R. et P:

ruizii Rehder

trilobum Meyen

valdivianum Phil. var. valdivianum

var. sessiliflorum Phil.

68

Saxifraga

magellanica Poir.

* umbrosa L.

Saxifragella

bicuspidata (Hook. f.) Engler

Saxifragodes

albowiana (Kurtz) D.M. Moore

Tetilla

hydrocotylifolia DC.

Tribeles

australis Phil.

Valdivia

gayana Remy

SCROPHULARIACEAE

Agalinis

linarioides (Cham. et Schlecht.) D'Arcy

Alonsoa

meridionalis (L.f.) O.K.

Bacopa

monnieri (L.) Wettst.

Bartsia

bartsioides (Hook.) Edwin

chilensis Benth.

meyeniana Benth.

Bellardia

* trixago (L.) All.

Calceolaria

abscondita Witasek

aconcaguina Phil.

alba R. et P.

ambigua Phil.

andina Benth. var. andina

var. andicola (Witasek) Reiche

arachnoidea Graham

asperula Phil.

atrovirens Witasek

biflora Lam. var. biflora

var. obtusifolia (Kunze ex Walp. et Schauer)

Clos

bipinnatifida Phil.

campanae Phil.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

cana Cav. var. cana

var. pannosa (Phil.) Reiche

cavanillesii Phil.

cheiranthoides Reiche ex Witasek

collina Phil.

corymbosa R. et P.

crassifolia Phil.

crenatiflora Cav.

densifolia Phil.

dentata R. et P. var. dentata

var. compacta (Phil.) Reiche

var. cumingiana (Witasek) Reiche

var. subincisa Benth.

exigua Witasek

fothergillii Soland. ex Aiton

filicaulis Clos

flabellifolia Kraenzl.

foliosa Phil.

germaini Witasek

glabrata Phil. var. glabrata

var. meyeniana (Phil.) Reiche

glandulifera Witasek

glandulosa Poepp. ex Benth. var. glandulosa

var. thyrsiformis Clos

gnaphaliifolia Kraenzl.

hollermayeri Kraenzl.

hypericina Poepp. ex DC.

integrifolia Murr.

juncalensis Kraenzl.

kingii Phil.

laetevirens Kraenzl.

lanceolata Cav. var. lanceolata

var. acutifolia (Witasek) Reiche

var. pusilla (Witasek) Reiche

lanigera Phil.

latifolia Benth. var. latifolia

var. longepetiolata (Phil.) Reiche

lepida Phil.

llaimae Kraenzl.

mendocina Phil.

mimuloides Clos

miserrima Kraenzl.

montana Cav.

nudicaulis Benth.

oligantha Phil.

pallida Phil.

paposana Phil.

paralia Cav.

pennellii Desc. et Bors.

petioalaris Cav. var. petioalaris

var. cuspidata (Phil.) Reiche

picta Phil.

pinifolia Cav.

69

pinnata L.

polyfolia Hook.

polyphylla Kraenzl.

polyrrhiza Cav.

pseudoglandulosa Clos

pubescens Phil.

pulchella Phil.

purpurea Graham

quadriradiata Phil.

quinamadivensis Kraenzl.

racemosa Cav.

recta Witasek

rugosa Hook. var. rugosa

var. chiloensis (Lindl.) Reiche

var. pristiphylla (Phil.) Reiche

rupicola Meigen

scabiosifolia Sims var. scabiosifolia

var. cicutifolia Kraenzl.

segethii Phil.

sessilis R. et P.

spatellifolia Kraenzil.

spathulata Witasek

stellariifolia Phil.

tenella Poepp.

tenera Phil.

thyrsiflora Graham var. thyrsiflora

var. alliacea Phil.

tripartita R. et P.

undulata Benth.

uniflora Lam. var. uniflora

var. darwinii (Benth.) Witasek ex Reiche

var. minima (Witasek) Reiche

uspallatensis Kraenzl.

valdiviana Phil.

vernicosa Phil.

volckmannii Phil.

werdermannii Kraenzl.

williamsi Phil.

Castilleja

communis Benth.

pumila (Benth.) Wedd.

Cymbalaria

* muralis Gaertn., Mey. et Scherb.

Digitalis

* purpurea L.

Euphrasia

adenonota Johnst.

andicola Benth.

antarctica Benth.

aurea F. Phil. ex Phil.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

chrysantha Phil.

debilis Wettst.

flavicans Phil.

formosissima Skottsb.

intricata Phil.

meiantha Clos

muscosa Phil.

perpusilla Phil.

philippi Wettst.

pubescens Benth.

subexserta Benth.

trifida Poepp. ex Benth.

villarricensis Phil.

Fonkia

uliginosa Phil.

Gerardia (ver Agalimas)

Gratiola

peruviana L. var. peruviana

Hebe

elliptica (G. Forster) Pennell

salicifolia (G. Forster) Pennell

Jovellana

punctata R. et P.

violacea (Cav.) G. Don

Kickxia

* elatine (L.) Dum.

Limosella

australis R. Br.

Linaria

* texana Scheele

* vulgaris Mill.

Lindernia

dubia (L.) Pennell

Melosperma

andicola Benth. var. andicola

var. angustifolia (Phil.) Rossow

Mimulus

acaulis Phil.

bridgesii (Benth.) Clos

crinitus A. Grant

cupreus Dombr.

depressus Phil. var. depressus

var. nanus (Phil.) Reiche

glabratus H.B.K. var. glabratus

var. externus (Skottsb.) Skottsb.

70

var. parviflorus (Lindl.) A. Grant

luteus L. var. luteus

var. nummularius Clos

var. rivularis Lindl.

var. variegatus (Lodd.) Hook.

var. younganus Hook.

pilosiusculus H.B.K.

Monttea

chilensis Gay var. chilensis

var. taltalensis Reiche

Orthocarpus

attenuatus A. Gray

laciniatus (H. et A.) Keck

Ourisia

alpina P. et E. var. alpina

var. pallens (P. et E.) Benth.

breviflora Benth. var. breviflora

var. uniflora (Phil.) Reiche

coccinea (Cav.) Pers. var. coccinea

var. elegans (Phil.) Reiche

var. minor Benth.

fragrans Phil.

fuegiana Skottsb.

melospermoides Phil.

microphylla P. et E.

muscosa Benth.

polyantha P. et E.

pygmaea Phil.

racemosa Clos

rosea Phil.

ruelloides (L.f.) O.K.

serpyllifolia Benth.

Parentucellia

* viscosa (L.) Caruel

Scrophularia

* umbrosa L.

Stemodia

durantifolia (L.) Sw.

Verbascum

* densiflorum Bertol.

* thapsus L.

* virgatum Stockes

Veronica

* anagallis-aquatica L.

* arvensis L.

* beccabunga L.

* chamaedrys L.

* officinalis L.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

* peregrina L. ssp. peregrina pinnata Phil.

ssp. xalapensis (H.B.K.) Pennell volckmannii (Phil.) Reiche

* persica Poir.

* serpyllifolia L. Latua

pubiflora (Griseb.) Phil.

Lycianthes (Ver Solanum)

SIMAROUBACEAE

Lycium

Ailanthus carolinianum Walter var. sandwicense (A. Gray)

altissima (Mill.) Swingle C. Hitchc.

chañar Phil.

chilense Miers ex A. DC.

SOLANACEAE distichum Meyen

: fragosum Miers

Benthamiella pie DEN

azorella (Skottsb.) Soriano minutifolium Remy

lanata Soriano rachidocladum Dunal

nordenskjoldii Dusén ex N.E. Br. vergarae Phil.

patagonica Speg.

Lycopersicon

Cacabus chilense Dunal

flavus Johnst. ,

integrifolius Phil. Nicandra

* physalodes (L.) Gaertn.

Cestrum

parqui L'Hérit. Nicotiana

Combera acuminata (Graham) Hook. var. acuminata

var. compacta Goodsp.

var. multiflora (Phil.) Reiche

cordifolia Phil.

Datura corymbosa Remy var. corymbosa

* stramonium L. glauca Graham

. linearis Phil.

Dunalia longibracteata Phil.

spinosa (Meyen) Dammer miersii Remy var. miersii

var. lychnoides (Remy) Goodsp.

noctiflora Hook. var. albiflora Comes

pauciflora Remy

petunioides (Griseb.) Millán

solanifolia Walp.

tabacum L.

undulata R. et P.

minima (Phil.) Sandw.

paradoxa Sandw.

*

Fabiana

bryoides Phil.

densa Remy var. densa

var. ramulosa Wedd.

denudata Miers *

imbricata R. et P.

squamata Phil.

viscosa H. et A. Nierembergia

kia repens R. et P.

glauca (Phil.) Johnst. Petunia

A z

Jaborosa parviflora A.H.L. Juss.

araucana Phil. Phrodus

caulescens Gill. et Hook. var. caulescens bridgesii Miers var. bridgesii

var. bipinnatifida (Dunal) Reiche var. nodosus (Miers) Reiche

decurrens Miers microphyllus (Miers) Miers

magellanica (Griseb.) Dusén pendulus (Phil.) Phil.

71

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Physalis

* peruviana L.

* pubescens L.

Reyesia

cactorum (Johnst.) D'Arcy

chilensis Gay

Juniperoides (Werd.) D'Arcy

parviflora (Phil.) Hunz.

Salpichroa

glandulosa (Hook.) Miers

Salpiglossis

sinuata R. et P.

spinescens Clos

Schizanthus

alpestris Poepp. ex Benth.

candidus Lindl.

grahamii Gill. ex Hook.

hookeri Gill. ex Graham

integrifolius Phil.

lacteus Phil.

laetus Phil.

litoralis Phil.

parvulus Sudzuki

pinnatus R. et P.

porrigens Graham

splendens Sudzuki

tricolor Grau et Gronb.

Solanum

albiflorum Phil.

alphonsii Dunal var. alphonsii

var. tagua-tagua Dunal

americanum Mill. var. americanum

andinum Reiche

brachyantherum Phil.

brevidens Phil. var. brevidens

var. glabrescens (Dunal) Hawkes

bridgesii Phil. var. bridgesii

var. ocellatum (Phil.) Witasek ex Reiche

congestiflorum Dunal var. congestiflorum

var. longifolium Dunal

var. pannosum (Phil.) Reiche

var. syringifolium (Kunth et Bouché) Reiche

coxii Phil.

crispum R. et P. var. crispum

var. elaeagnifolium Dunal

cyrtopodium Dunal

elaeagnifolium Cav. var. leprosum (Ort.) Dunal

var. obtusifolium (Dunal) Dunal

etuberosum Lindl.

euacanthum Phil.

72

*

fernandezianum Phil.

fragile Wedd.

feuillei Dunal

furcatum Dunal ex Poir. var. furcatum

var. acutedentatum Nees

var. obtusedentatum Nees

var. subintegerrimum Nees

gaudichaudii Dunal

gayanum (Remy) Reiche

herba-bona Reiche

heterantherum Witasek ex Reiche

infundibuliforme Phil.

insulae-paschalis Bitter

juncalense Reiche var. juncalense

krauseanum Phil.

ligustrinum Lodd.

lycioides L.

lycopersicoides Dunal

maglia Schlecht.

marginatum L.f.

maritimum Meyen ex Nees

masafueranum Bitter et Skottsb.

metarsium Morton

nigrescens Martens et Gal.

nigrum L. var. nigrum

var. aguaraquiya (Piso ex Sendt.) Reiche

var. atriplicifolium (Desp. ex Dunal) Dunal

var. stylosum Witasek ex Reiche

nitidibaccatum Bitter

nitidum R. et P.

novemlobum Dunal var. novemlobum

var. pauciflorum Dunal

oceanicum Brúcher

palustre Poepp. ex Schlecht.

patagonicum Morton

pentlandii Dunal subsp. interandinum (Bitter)

Edmonds

phyllanthum Cav. var. phyllanthum

var. aberrans (Phil.) Witasek ex Reiche

var. crassipes (Phil.) Witasek ex Reiche

pinnatum Cav. var. pinnatum

var. subintegrifolium (Dunal) Reiche

var. tomentosum (Remy) Reiche

polyphyllum Phil.

pseudocapsicum L.

puberulum Phil.

pyrrhocarpum Phil.

radicans L.f.

remyanum Phil.

robinsonianum Bitter

runcinatum R. et P.

sanfurgoi Phil.

sisymbriifolium Lam.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

sitiens Johnst.

styleanum Dunal

subandinum Meigen

sublobatum Willd. ex Roem. et Schult.

tredecimgranum Bitter

tuberosum L. var. tuberosum

var. guaytecarum (Bitter) Hawkes

tweedianum Hook.

valdiviense Dunal

weddellii Phil.

Trechonaetes

floribunda Phil.

laciniata Miers

lanigera Phil.

parviflora Phil.

Vestia

foetida (R. et P.) Hoffmanns.

STERCULIACEAE

Waltheria

indica L.

STYLIDIACEAE

Phyllachne

uliginosa J.R. et G. Forster

TETRACHONDRACEAE

Tetrachondra

patagonica Skottsb. ssp. fuegiana D.M. Moore

THYMELAEACEAE

Drapetes

muscosus Banks ex Lam.

Ovidia

andina (P. et E.) Meisn.

pillopillo (Gay) Meisn.

TILIACEAE

Triumfetta

semitriloba L.

73

TROPAEOLACEAE

Tropaeolum

azureum Miers ex Savi

brachyceras H. et A.

chilense Bert. ex Savi

ciliatum R. et P.

gracile (H. et A.) Sparre

hookerianum Barn.

incisum (Speg.) Sparre

kingii Phil.

leptoceras Johnst.

leptophyllum G. Don

looseri Sparre

* majus L.

myriophyllum (P. et E.) Sparre

polyphyllum Cav.

rhomboideum Lem.

sessilifolium P. et E.

speciosum P. et E.

tricolor Sweet

UMBELLIFERAE

Ammi

* visnaga (L.) Lam.

Anethum

* graveolens L.

Anthriscus

* caucalis Bieb.

Apium

andinum Phil.

angustilobum (Phil.) Reiche

apioides (Phil.) Reiche

australe Thouars

biternatum (Phil.) Reiche

fernandezianum Johow

flexuosum Phil.

graveolens L.

humile (Phil.) Reiche

laciniatum (DC.) Urban var. laciniatum

var. gracile (Clos) Reiche fma. gracile

fma. deserticolum (Phil.) Wolff

fma. elatium (H. et A.) Wolff

var. hispidulum Wolff

leptophyllum (Pers.) F. Muell. ex Benth. var. lep-

tophyllum

nodiflorum (L.) Reichenb. f. var. vulgare (F.

Schultz) Wolff

panul (Bert. ex DC.) Reiche var. panul

var. araucanum (Phil.) Reiche

*

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

peucedanoides (K. Presl ex DC.) Reiche var. peu-

cedanoides

var. longifolium (K. Presl ex DC.) Wolff

var. tenuifolium (K. Presl ex DC.) Wolff

philippii Wolff

pimpinellifolium (Phil.) Reiche

prostratum Labill.

ranunculifolium (DC.) Gay

sellowianum Wolff

Asteriscium

aemocarpon Clos

chilense Cham. et Schlecht.

closii (O.K.) Math. et Const.

vidalii Phil.

Azorella

albida Phil.

ameghinol Speg.

bolacina Clos

caespitosa Cav.

compacta Phil.

crassipes Phil.

diapensioides A. Gray

diversifolia Clos

filamentosa Lam.

fuegiana Speg.

gilliesii (Hook.) H. et A.

incisa (Griseb.) Wedd.

lycopodioides Gaud. var. lycopodioides

var. chilensis Clos

var. vaginata (Phil.) Reiche

madreporica Clos. var. madreporica

var. muscoides (Phil.) Reiche

monantha Clos

nivalis Phil.

pectinata Phil.

piligera Phil.

rahmeri Phil.

selago Hook. f.

trifoliolata Clos var. trifoliolata

var. depauperata (Phil.) Reiche

trifurcata (Gaertn.) Hook.

Bolax

bovei (Speg.) Dusén

gummifera (Lam.) Spreng.

Bowlesia

incana R. et P.

macrophysa Zoell.

paposana Johnst.

sodiroana Wolff

tropaeolifolia Gill. et Hook.

uncinata Colla

Bustillosia (Ver Asteriscium)

Centella

asiatica (L.) Urban

triflora (R. et P.) Nannf.

Conium

* maculatum L.

Daucus

* carota L.

* montanus H. et B. ex Spreng.

* pusillus Michx.

Diposis

bulbocastanea (Bert. ex DC.) DC.

Domeykoa

oppositifolia Phil.

perennis Johnst.

Eremocharis

fruticosa Phil.

Eryngium

anomalum H. et A.

bupleuroides H. et A.

cardosii Clos

coquimbanum Phil. ex Urban

depressum H. et A. var. depressum

var. bridgesii Wolff

fernandezianum Skottsb.

humifusum Clos var. humifusum

var. pratense (Phil.) Reiche

inaccessum Skottsb.

macracanthum Phil.

paniculatum Cav. et Domb. ex Delar.

polyrrhizum Clos

pseudojunceum Clos var. pseudojunceum

var. bracteosum Wolff

var. crantzioides (Griseb.) Reiche

var. fistulosum (Phil.) Reiche

pulchellum Phil.

rostratum Cav. var. rostratum

var. diversifolium Phil. ex Wolff

sarcophyllum H. et A.

sparganioides Clos

Foeniculum

* vulgare Mill.

Gymnophyton

flexuosum Clos

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

foliosum Phil. pauciflorum Reiche

isatidicarpum (K. Presl ex DC.) Math. et Const. reichei Wolff

robustum Clos spinosum (Cav.) Pers. var. spinosum

spinosissimum Phil. var. chillanense (Phil.) Reiche

var. laxum (Phil.) Reiche

Homalocarpus e 2

ulicinum Gill. ex Hook.

bowlesioides H. et A.

dichotomus (Poepp. ex DC.) Math. et Const.

digitatus (Phil.) Math. et Const. scabra (Wolff) Macbr.

dissectus Math. et Const.

integerrimus (Turcz.) Math. et Const.

nigripetalus (Clos) Math. et Const.

Niphogeton

Oreomyrrhis

hookeri Math. et Const.

Huanaca Osmorhiza

acaulis Cav. chilensis H. et A.

andina (Phil.) Phil. depauperata Phil.

boelckei Math. et Const. glabrata Phil.

burkartii Math. et Const. Parnada

Hydrocotyle * sativa L.

alchemilloides A. Rich. Poroa

bonariensis Comm. ex Lam.

coriacea Lag.

chamaemorus Cham. et Schlecht. var. chamae-

volcanica Math. et Const.

morus

var. valdiviana (Phil.) Reiche Sanicula

indecora DC. crassicaulis Poepp. ex DC.

marchantioides Clos graveolens Poepp. ex DC.

modesta Cham. et Schlecht. .

poeppigii DC. var. poeppigii PE

var. geranioides (A. Rich.) Reiche * pecten-veneris L.

ranunculoides L.f. Schizeilema (Ver Huanaca)

umbellata L.

verticillata Thunb. Seseli

volckmannii Phil. * libanotis (L.) Koch

Laretia Smyrnium

acaulis (Cav.) Gill. et Hook. * olusatrum L.

Lilaeopsis Torilis

andina A.W. Hill var. andina * nodosa (L.) Gaertn.

var. multivittata A.W. Hill

hillii Pér.-Mor.

sinuata A.W. Hill URTICACEAE

Mulinum

albovaginatum Gill. et Hook. Boehmeria

crassifolium Phil. excelsa (Bert. ex Steud.) Wedd.

cryptanthum Clos OL.

cuneatum H. et A. Parietaria

hirsutum Phil. debilis G. Forster var. debilis

leptacanthum Phil. var. gracilis Lowe

microphyllum (Cav.) Pers. var. micrantha (Ledeb.) Wedd.

ovalleanum Phil. feliciana F. Phil.

patagonicum Speg. fernandeziana (Steud.) Navas

75

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Pilea

elegans Gay

elliptica Hook. f.

Soleirolia

*

soleirolii (Req.) Dandy

Urtica

*

andicola Wedd.

berteroana Phil.

buchtieniz Ross

dioica L. var. dioica

var. mollis (Steud.) Wedd.

fernandeziana (Gay) Ross ex Skottsb.

flabellata H.B.K.

magellanica Poir.

masafuerae Phil.

pseudo-dioica Steud.

trichantha (Wedd.) Acev. ex Navas

urens L.

VALERIANACEAE

Plectritis

samolifolia (DC.) Hoeck

Stangea

paulae Graebn.

Valeriana

aequiloba Clos

atacamensis Phil.

bracteosa Phil.

bridgesil H. et A.

carnosa J.E. Sm.

chilensis Bors.

clarionifolia Phil.

crispa R. et P.

floribunda Phil.

foncki Phil.

fragilis Clos

graciliceps Clos

grandifolia Phil.

hebecarpa DC.

hornschuchiana Walp.

hyalinorrhiza R. et P.

interrupta R. et P.

lapathifolia Vahl

laxiflora DC.

lepidota Clos

leucocarpa DC.

lobata (H. et A.) Hoeck

76

macrorhiza Poepp. ex DC.

magellanica Hombr. et Jacq.

magna Clos

nivalis Wedd.

obtusifolia DC.

oreocharis Phil.

papilla Bert. ex DC.

peltata Clos

philippiana Briqg.

polemoniifolia Phil.

radicalis Clos

sedifolia D'Urv.

senecioides Phil.

sphaerocarpa Phil.

stricta Clos

urbanii Phil.

vaga Clos

valdiviana Phil.

velutina Clos

verticillata Clos

virescens Clos

Valerianella

* locusta (L.) Laterr.

* muricata (Steven ex Bieb.) Loud.

VERBENACEAE

Acantholippia

punensis Botta

tarapacana Botta

trifida (Gay) Mold.

Aloysia

fonckii (Phil.) Mold.

* looseri Mold.

salviifolia (H. et A.) Mold.

* triphylla (L'Hérit.) Britton

Diostea

cinerascens (Schauer) Mold.

juncea (Gill. et Hook.) Miers

Glandularia (Ver también Verbena) (14)

crithmifolia (Gill. ex Hook.) Schnack et Covas

dissecta (Willd.) Schnack et Covas

laciniata (L.) Schnack et Covas

origenes (Phil.) Schnack et Covas

radicans (Gill. et Hook.) Schnack et Covas

sulphurea (D. Don) Schnack et Covas

Junellia

ameghinoi (Speg.) Mold.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

asparagoides (Gill. et Hook.) Mold.

aspera (Gill. et Hook.) Mold.

bryoides (Phil.) Mold.

caespitosa (Gill. et Hook.) Mold.

connatibracteata (O.K.) Mold.

digitata (Phil.) Mold.

erinacea (Gill. et Hook.) Mold.

glauca (Gill. et Hook.) Mold.

hystrix (Phil.) Mold.

illapelina (Phil.) Mold.

juniperina (Lag.) Mold.

lavandulifolia (Phil.) Mold. var. lavandulifolia

var. colchaguensis (Phil.) Mold.

micrantha (Phil.) Mold.

minima (Meyen) Mold.

minutifolia (Phil.) Mold.

patagonica (Speg.) Mold.

selaginoides (Kunth) Mold.

seriphioides (Gill. et Hook.) Mold.

serpyllifolia (Speg.) Mold.

silvestrii (Speg.) Mold.

spathulata (Gill. et Hook.) Mold.

thymifolia (Lag.) Mold.

tridactyla (Phil.) Mold.

tridens (Lag.) Mold.

trifurcata (Phil.) Mold.

ulicina (Phil.) Mold.

uniflora (Phil.) Mold.

Lampaya

medicinalis Phil.

Lippia

fragrans Turcz.

geisseana (Phil.) Solereder

turbinata Griseb.

Phyla

* canescens (H.B.K.) Greene

* nodiflora (L.) Greene var. nodiflora

var. rosea (D. Don) Mold.

* reptans (H.B.K.) Greene

Pitraea

cuneato-ovata (Cav.) Caro

Rhaphithamnus

spinosus (A.L. Juss.) Mold.

venustus (Phil.) B.L. Rob.

Urbania

egañioides Phil.

pappigera Phil.

Verbena (Ver también Glandularia) (14)

araucana Phil.

atacamensis Reiche

berteril (Meisn.) Schauer fma. berterii

fma. albiflora Mold.

bonariensis L.

brasiliensis Vell. var. brasiliensis

var. subglabrata Mold.

clavata R. et P.

concepcionis Mold.

corymbosa R. et P.

crithmifolia Gill. et Hook.

cumingii Mold.

cuneifolia R. et P.

dissecta Willd.

gynobasis Wedd.

hispida R. et P.

laciniata (L.) Briq.

landbeckii Phil.

lipozygioides Walp.

litoralis H.B.K.

multiglandulosa Mold.

origenes Phil.

paulsenii Phil.

polycephala Turcz.

porrigens Phil.

pseudojuncea Clos

radicans Gill. et Hook.

ramulosa Phil.

ribifolia Walp. var. ribifolia fma. ribifolia

fma. alba Acev.

var. foetida (Phil.) Acev.

var. longavina (Phil.) Acev.

rigida Spreng.

scoparia Gill. et Hook.

spartioides Turcz.

sulphurea D. Don var. sulphurea fma. sulphurea

fma. alba Mold.

var. fuscorubra Skottsb.

var. intermedia O.K.

var. longituba O.K.

pedunculata Gay

var. scabra Acev.

var. taltalensis Mold.

trachea Phil.

trifida H.B.K. var. deserticola Mold.

triternata Phil.

var.

77

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

VIOLACEAE

Hybanthus

parviflorus (Mutis ex L.f.) Baillon var. chamae-

dryfolius (K. Presl) Sparre

Viola

acanthophylla Leyb. ex Reiche

aizoon Reiche

angustifolia Phil.

araucaniae Becker

* arvensis Murray ssp. arvensis

ssp. andina Becker

atropurpurea Leyb.

aurantiaca Leyb.

aurata Phil.

auricula Leyb.

bicolor Reiche

brachypetala Gay

buchtienii Gaud.

bustillosia Gay

calderensis Becker

capillaris Pers. var. capillaris

var. araucana (Phil.) Reiche

var. dumetorum (Phil.) Reiche

canobarbata Leyb.

chamaedrys Leyb.

chrysantha Phil.

commersonil DC.

corralensis Phil.

cotyledon Gingins

curicoensis Becker

cyathiformis Becker

decipiens Reiche

domeykoana Gay

fluehmannii Phil.

friderici Becker

frigida Phil. var. frigida

var. borchersii (Phil.) Reiche

germainil Sparre

glacialis P. et E.

glechomoides Leyb.

godoyae Phil.

granulosa Wedd.

huidobrii Gay

johnstonii Becker

lanifera Becker

leyboldiana Phil.

litoralis Phil.

llullaillacoensis Becker

maculata Cav. var. maculata

var. megaphylla DC. fma. megaphylla

*

78

fma. chilensis Weibel

var. microphyllos (Poir.) DC. fma. micro-

phyllos

fma. fimbriata (Steud.) Weibel

fma. septentrionalis (Kalela) Weibel

var. pubescens Reiche fma. pubescens

fma. chillanensis Sparre

fma. constitucionensis Sparre

fma. grandidentata (Kalela) Sparre

fma. muñozil Sparre

magellanica G. Forster

minutiflora Phil.

montagnei Gay var. montagnel

var. glandulosa Phil.

muscoides Phil.

nassauvioides Phil.

nubigena Leyb.

odorata L.

ovalleana Phil.

philippii Leyb. var. philippi

var. arbuscula (Phil.) Reiche

polypoda Turcz.

popetae Sparre

portalesia Gay var. portalesia

var. integerrima (Phil.) Reiche

portulacea Leyb.

pulchella Leyb. ex Reiche

pulvinata Reiche

pusilla Poepp. (15)

reichei Skottsb. fma. reichei

fma. gunckelii Sparre

rhombifolia Leyb.

rosulata P. et E.

rubella Cav. var. rubella

var. angustifolia Gingins

var. latifolia Gingins

rudolphii Sparre

rugosa Phil. ex Becker

santiagoensis Becker

sempervivum Gay

skottsbergiana Becker

taltalensis Becker var. taltalensis

var. glaberrima Becker

tricolor L.

tridentata Menz. ex DC.

truncata Meyen var. truncata

var. glaberrima Becker

var. glandulifera Becker

vallenarensis Becker

volcanica Gill. ex H. et A. var. volcanica

var. chillanensis (Phil.) Reiche

var. exilis (Phil.) Reiche

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

werdermannii Becker var. werdermannii fma. winteri J.R. et G. Forster var. winteri

werdermannii

fma. glandulifera Becker

var. glaberrima Becker

VITACEAE

Cissus

striata R. et P.

VIVIANIACEAE

Araeoandra

tenuicaulis (Barn.) Lefor

Cissarobryon

elegans Kunze ex Poepp.

Viviania

crenata (Hook.) G. Don

marifolia Cav.

ovata Phil.

WINTERACEAE

Drimys

confertifolia Phil.

var. andina Reiche

var. chilensis (DC.) A. Gray

ZYGOPHYLLACEAE

Bulnesia

chilensis Gay

Fagonia

chilensis H. et A. var. chilensis

var. aspera (Gay) Johnst.

subaphylla Phil.

Larrea

cuneifolia Cav.

divaricata Cav.

nitida Cav.

Metharme

lanata Phil.

Pintoa

chilensis Gay

Porlieria

chilensis Johnst.

Tribulus

* terrestris L.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

ANGIOSPERMAE: MONOCOTYLEDONEAE

ALISMATACEAE

Alisma

plantago-aquatica L.

Sagittaria

montevidensis Cham. et Schlecht. ssp. chilensis

(Cham. et Schlecht.) Bogin

AMARYLLIDACEAE

Alstroemeria

andina Phil.

angustifolia Herb.

aurantiaca D. Don

chillanensis Grau et Bayer

citrina Phil.

crispata Phil.

diazii Phil.

gayana Phil.

graminea Phil.

haemantha R. et P.

hookeriana Schult.

Kingii Phil.

leporina Bayer et Grau

ligtu L.

nivalis Meyen

oreas Schauer

parvula Phil.

patagonica Phil.

pelegrina L.

polyphylla Phil.

pulchra Sims var. pulchra

var. maxima Phil.

recumbens Herb.

revoluta R. et P.

schizanthoides Grau

sierrae Muñoz

spathulata K. Presl

tigrina Phil.

venustula Phil.

violacea Phil.

Bomarea

engleriana Kraenzl.

involucrosa (Herb.) Baker

salsilla (L.) Herb.

80

Famatina

maulensis Ravenna

Hippeastrum (Ver también Famatina y Rhodophala)

advenum (Ker-Gawl.) Herb.

ananuca Phil.

andicola (Poepp.) Baker

angustifolium Phil.

araucanum Phil.

bagnoldii (Herb.) Baker

bakeri (Phil.) Traub et Uphof

berteroanum (Phil.) Baker

bicolor (R. et P.) Baker

chilense (L'Hérit.) Baker

colonum Phil.

consobrinum Phil.

fulgens (Hook. f.) Phil.

gayanum O.K.

igneum (Lindl.) Muñoz

laetum Phil.

lineatum (R. et P.) Baker

modestum (Phil.) Baker

moelleri Phil.

montanum (Lindl.) Baker

pratense (Poepp.) Baker

purpuratum Phil.

rhodolirion Baker

roseum (Sweet) Baker

solisii Phil.

splendens Renjifo

tenuiflorum Phil.

uniflorum (Phil.) Baker

Leontochir

ovallei Phil.

Phycella (Ver Hippeastrum)

Placea

amoena Phil.

arzae Phil.

germainil Phil.

grandiflora Lem.

lutea Phil.

ornata Miers ex Lindl.

Rhodophiala (Ver también Hippeastrum)

ovalleana Ravenna

phycelloides (Herb.) Hunz.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Traubia

modesta (Phil.) Ravenna

APONOGETONACEAE

Aponogeton

* distachyos L.f.

ARACEAE

Pistia

* stratiotes L.

BROMELIACEAE

Deuterocohnia

chrysantha (Phil.) Mez

Fascicularia

bicolor (R. et P.) Mez

kirchhoffiana (Wittm.) Mez

litoralis (Phil.) Mez

micrantha (Phil.) Mez

pitcairniifolia (Verlot) Mez

Greigia

berteroi Skottsb.

landbeckii (Lechler ex Phil.) Phil. ex F. Phil.

sphacelata (R. et P.) Regel

Ochagavia

chamissonis (Mez) Smith et Looser

elegans Phil.

grandiflora (Phil.) Mez

lindleyana (Lem.) Mez

Puya

alpestris (Poepp.) Gay

berteroniana Mez

boliviensis Baker

chilensis Mol.

coerulea Lindl. var. coerulea

var. intermedia (Smith et

Looser) Smith et Looser

var. monteroana (Smith et Looser) Smith et

Looser

var. violacea (Brongn.) Smith et Looser

quillotana W. Weber

venusta Phil.

81

Tillandsia

capillaris R. et P. fma. capillaris

fma. virescens (R. et P.) L.B. Sm.

geissei Phil.

landbeckii Phil.

usneoides (L.) L.

CENTROLEPIDACEAE

Gaimardia

australis Gaud.

CORSIACEAE

Arachnitis

uniflora Phil.

CYPERACEAE

Bulbostylis

juncoides (Vahl) Kuek. var. lorentzii (Boeck.)

Kuek.

Carex

acaulis D'Urv.

acutata Boott var. acutata

var. multispicata (Kunze) Kuek.

aematorrhyncha Desv. var. aematorrhyncha

var. corralensis (Phil.) Kuek.

andersonii Boott

andina Phil. var. andina

aphylla Kunth

atropicta Steud. var. atropicta fma. atropicta

fma. monodynama Griseb.

var. platycarpa Phil. ex Kuek.

aueri Kalela

banksii Boott var. banksii

var. distans Kuek. fma. brevifolia Kuek.

var. fonckii (Phil.) Kuek.

var. odontolepis (Phil.) Kuek. fma. odonto-

lepis

fma. ochrostachya (Phil.) Kuek.

barrosii Nelmes

beecheyana Boott ex Desv.

berteroniana Steud.

bonariensis Desf. ex Poir. var. trachycystis (Gri-

seb.) Kuek.

bracteosa Kunze ex Kunth

brasiliensis St.-Hil.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

brongniartii Kunth

caduca Boott

canescens L. var. canescens

capitata L.

colchaguensis (Phil.) Kuek.

curta Gooden. var. robustior (Blytt ex Anderss.)

D.M. Moore et Chater

darwinii Boott var. darwinil

var. serranol (Phil.) Kuek.

var. urolepis (Franchet) Kuek.

decidua Boott

fuscula D'Urv. var. fuscula fma. fuscula

fma. indecora (Kunth) Kuek.

var. distenta (Kunze) Kuek.

var. hieronymi (Boeck.) Kuek.

var. pseudextensa Kuek.

gayana Desv. var. gayana

var. densa Kuek.

var. schedonautos (Steud.) Kuek.

var. taurina (Phil.) Kuek.

hispida Willd. ex Schkuhr

lamprocarpa Phil. var. lamprocarpa

var. rotundata Kuek.

latibracteolata Kuek.

macloviana D'Urv. var. macloviana fma. maclo-

viana

fma. bracteata Kuek.

var. pseudoleporina Kuek.

var. thermarum (Phil.) Kuek.

macrorrhiza Boeck. var. macrorrhiza

var. simplex Kuek.

macrosolen Steud.

magellanica Lam.

maritima Gunn. var. maritima

var. misera (Phil.) Fern.

microglochin Wahlenb. ssp. fuegina Kuek.

molinae Phil.

nebularum Phil. var. nebularum

var. kurtziana (Kuek.) Kuek.

nigra (L.) Reichard

nitens Phil.

patagonica Speg.

phalaroides Kunth

pseudocyperus L. var. haenkeana (]. et K. Presl)

Kuek. fma. haenkeana

fma. pallidior Kuek.

pumila Thunb. var. pumila

var. urvillaei (Brongn.) Kuek.

reichei Kuek.

riparia Curtis var. chilensis (Brongn.) Kuek.

setifolia Kunze var. setifolia

var. berteroana (Desv.) Gunckel

var. pungens (Boeck.) Kuek.

82

sorianoi Barros

subantarctica Speg.

trichodes Steud. ex Boeck. var. trichodes

var. lateriflora (Phil.) Kuek.

trifida Cav.

vallis-pulchrae Phil.

volckmannii Phil.

werdermannii Gross ex Werd.

Carpha

alpina R. Br. var. schoenoides (Banks et Soland.

ex Hook. f.) Kuek.

Chillania (Ver Eleocharis)

Cladium (Ver Machaerina)

Cyperus

articulatus L.

boeckeleri Phil.

brevifolius (Rottb.) Hassk.

corymbosus Rottb.

cyperoides (L.) O.K.

diffusus Vahl ssp. chalaranthus (J. et K. Presl)

Kuek.

eragrostis Lam. var. eragrostis fma. eragrostis

fma. latifrons Kuek.

grammicus Kunze ex Kunth

laetus Kunth ssp. oostachyus (Nees) Kuek. var.

conceptionis (Steud.) Kuek.

laevigatus L. var. laevigatus

var. pallae (Kneucker) Kuek.

var. reptans (Boeck.) C.B. Clarke

lanceolatus Poir. var. compositus J. et K. Presl

megapotamicus Kunth var. megapotamicus

var. jaeggil (Boeck.) Kuek. ex Barros

niger R. et P.

poeppigii Kunth

polystachyos Rottb.

reflexus Vahl var. reflexus

rivularis Kunth ssp. lagunetto (Steud.) Kuek.

rotundus L.

squarrosus L.

virens Michx. var. montanus (Boeck.) Denton

volckmannii Phil.

xanthostachyus Steud.

Eleocharis

albibracteata Nees et Meyen ex Kunth

atacamensis Phil.

bonariensis Nees

costulata Nees et Meyen ex Kunth

dombeyana Kunth

exigua (H.B.K.) Schult.

fusco-purpurea (Steud.) Pfeiffer

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

lechleri Boeck.

macrostachya Britton

maculosa (Vahl) R. Br.

melanomphala C.B. Clarke

melanostachys (D'Urv.) C.B. Clarke

nodulosa (Roth) Schult.

nubigena C.B. Clarke ex Urban

pachycarpa Desv.

palustris (L.) Roem. et Schult.

pauciflora (Lightf.) Link

radicans (Poir.) Kunth

rivularis Phil.

striatula Desy.

uniflora Seberg

Machaerina

scirpoidea (Steud.) Koyama

Oreobolus

obtusangulus Gaud.

Rhynchospora

brownii Roem. et Schult. ssp. americana Guag]l.

Schoenus

andinus (Phil.) Pfeiffer

antarcticus (Hook. f.) Dusén

nitens (R. Br.) Poir. ssp. krausei (Phil.) Kuek.

rhynchosporoides (Steud.) Kuek.

Scirpus

acaulis Phil.

americanus Pers. ssp. monophyllus (J. et K. Presl)

Koyama var. monophyllus

var. conglomeratus (H.B.K.) Koyama

angustisquamis Beetle

asper J. et K. Presl var. asper

var. diffusus (Beetle) Beetle

atacamensis (Phil.) Boeck.

californicus (C.A. Mey.) Steud. ssp. californicus

var. californicus

var. paschalis (Kuek.) Beetle

ssp. tatora (Kunth) Koyama

cernuus Vahl var. cernuus

var. durus C.B. Clarke

cubensis Poepp. et Kunth var. gracilis (Boeck.)

Beetle

deserticola Phil.

inundatus (R. Br.) Poir.

macrolepis Phil.

maritimus L.

melanocaulos Phil.

molinianus Beetle

83

nevadensis S. Wats. var. remireoides (Griseb.)

Beetle

nodosus Rottb.

olneyi A. Gray ex Engelm. et Gray

ranco (Steud.) Beetle

spegazzianus Barros

trachycaulos Phil.

Uncinia

brevicaulis (Thouars) Kunth

douglasii Boott

erinacea (Cav.) Pers.

kingi Boott

lechleriana Steud. var. lechleriana

var. triquetra (Kuek.) Kuek.

macrolepis Dcne.

macrophylla Steud.

multifaria Nees ex Boott var. multifaria

var. macrostachya (Desv.) C.B. Clarke

negeri Kuek.

phleoides (Cav.) Pers. var. phleoides

var. longispica (Boeck.) C.B. Clarke

var. nux-nigra C.B. Clarke

var. trichocarpa (C.A. Mey.) C.B. Clarke

tenuis Poepp. ex Kunth

DIOSCOREACEAE

Dioscorea

acerifolia Phil.

andina Phil.

antucoana Uline ex Knuth

araucana Phil.

aristolochiifolia Poepp.

auriculata Poepp.

axilliflora Phil.

besseriana Kunth var. besseriana

var. berterii Uline ex Knuth

brachybothrya Poepp. var. brachybothrya

var. germainii Uline ex Knuth

var. reticulata (Gay) Uline ex Knuth

brachystachya Phil.

bridgesii Griseb. ex Kunth

bryoniifolia Poepp.

buchtienii Knuth

cissophylla Phil.

fastigiata Gay

gay1 Phil.

geissel Phil.

gracilis H. et A.

humifusa Poepp. var. humifusa

var. gracilis (H. et A.) Navas

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

ionophylla Uline ex Knuth

litoralis Phil.

longipes Phil.

modesta Phil.

nana Poepp.

nervosa Phil.

obtusifolia H. et A. var. obtusifolia

var. philippii Uline ex Knuth

oligophylla Phil.

parviflora Phil.

parvifolia Phil.

paupera Phil.

pedatifida Phil.

pedicellata Phil.

pencana Phil.

philippiana Uline ex Knuth

saxatilis Poepp.

stenocolpus Phil.

tenella Phil.

tenuis Knuth

uliginosa Phil.

valdiviensis Knuth

variifolia Bert. ex Colla

volckmannii Phil.

Epipetrum

bilobum Phil.

humile (Bert. ex Colla) Phil.

polyanthes Reiche

GRAMINEAE

Agropyron (Ver Elymus)

Agrostis

* alba L.

* arvensis L.

breviculmis Hitchc.

campestris Phil.

* canina L.

* capillaris L.

exasperata Trin.

flavidula Steud.

fuegiana Hackel

gelida Trin.

glabra (J. Presl) Kunth var. glabra

var. melanthes (Phil.) Rúg. et De Paula

imberbis Phil.

inconspicua Kunze

kuntzei Mez

leptotricha Desv.

magellanica Lam.

masafuerana Pilger

meyenii Trin.

nemoralis Phil.

oligoclada Phil.

philippiana Rúg. et De Paula

pyrogea Speg.

santacruzensis Speg.

serranoli Phil.

stenophylla Phil.

stolonifera L. var. stolonifera

var. palustris (Hudson) Farw.

tolucensis H.B.K.

uliginosa Phil.

umbellata Colla

vidalii Phil.

williamsii Phil.

*

Aira

* caryophyllea L.

* elegantissima Schur

* praecox L.

Alopecurus

heleochloides Hackel

* geniculatus L. var. geniculatus

lechleri Steud.

magellanicus Lam. var. magellanicus

var. bracteatus (Phil.) Mariano

myosuroides Hudson

Ammophila

* arenaria (L.) Link

Amphibromus

scabrivalvis (Trin.) Swallen var. scabrivalvis

Andropogon

Anisantha (Ver Bromus)

Anthochloa

lepidula Nees et Meyen

Anthoxanthum

altissimum (Steud.) Veldk.

gunckelii (Parodi) Veldk.

juncifolium (Hackel) Veldk.

* odoratum L.

pusillum (Dusén) Veldk.

redolens (Vahl) Royen

spicatum (Parodi) Veldk.

utriculatum (R. et P.) Schouten et Veldk.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Apera

* interrupta (L.) P. Beauv.

Aristida

* adscensionis L.

longiseta Steud.

pallens Cav.

spegazzinii Arech. var. spegazzinil

Arrhenatherum

* elatius (L.) P. Beauv. ex J. et K. Presl ssp. elatius

ssp. bulbosus (Willd.) Schúb. et Martens

Arundo

* donax L.

Atropis (Ver Puccinellia)

Avena

* barbata Pott ex Link

* fatua L.

E sativa L.

>stenilis L.

* strigosa Schreb.

Axonopus

paschalis Pilger

Botelua

simplex Lag.

Bothriochloa

* ischaemum (L.) Keng

* laguroides (DC.) Herter

* saccharoides (Sw.) Rydb.

Bouteloua (Ver Botelua)

Briza

* maxima L.

* minor L.

Bromelica

cepacea (Phil.) Nicora

Bromidium

anomalum (Trin.) Doell

trisetoides (Steud.) Rúgolo

Bromus

araucanus Phil.

berterianus Colla

burkartii Muñoz

catharticus Valh

coloratus Steud.

dolichostachys Phil.

fonckii Phil.

* hordeaceus L.

lanatus H.B.K.

* madritensis L.

mango Desv.

pellitus Hackel

* racemosus L.

* rigidus Roth

scoparius L. var. scoparius

var. villiglumis Maire et Weill.

* secalinus L.

setifolius J. Presl

stamineus Desyv.

* sterilis L.

* tectorum L.

tunicatus Phil.

unioloides H.B.K.

Calamagrostis (Ver también Deyeuxia)

ampliflora Tovar

cephalantha Pilger

preslii (Kunth) Hitchc.

rigida (H.B.K.) Trin. ex Steud.

rigescens (J. Presl) Scribn.

Calotheca

brizoides (Lam.) A.N. Desyv.

Catabrosa

aquatica (L.) P. Beauv.

werdermannii (Pilger) Nic. et Rúg.

Cenchrus

* echinatus L.

* incertus M. Curtis

* myosuroides H.B.K.

Ceratochloa (Ver Bromus)

Chaetotropis

asperigluma (Steud.) Nicora

chilensis Kunth

elongata (H.B.K.) Bjórk.

imberbis (Phil.) Bjórk.

Chascolytrum

subaristatum (Lam.) A.N. Desv.

Chloris

* gayana Kunth

* radiata (L.) Sw.

* virgata Sw.

Chusquea

argentina Parodi

breviglumis Phil.

(16)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

culeou Desv.

cumingil Nees

decolorata Munro ex Parodi

fernandeziana Phil.

macrostachya Phil.

montana Phil.

palenae Phil.

Cynosurus

* cristatus L.

* echinatus L.

Dactylis

* glomerata L.

Danthonia

parviflora Phil.

quila Kunth

uliginosa Phil.

Cinna

valdiviana Phil.

Cortaderia

araucana Stapf var. araucana

var. fuenzalidae Acev.

var. skottsbergii Acev.

atacamensis (Phil.) Pilger

pilosa (D'Urv.) Hackel var. pilosa

var. minima (Conert) Nicora

rudiuscula Stapf

selloana (Schult.) Aschers. et Graebn.

speciosa (Nees et Meyen) Stapf

Critesion

brachyatherum (Phil.) Lóve

chilense (Roem. et Schult.) Lóve

comosum (J. Presl) Lóve

* jubatum (L.) Nevski

lechleri (Steud.) Lóve

magellanicum (Parodi et Nicora) Lóve

* marinum (Hudson) Lóve

murinum (L.) Lóve ssp. murinum

ssp. leporinum (Link) Lóve

muticum (J. Presl) Lóve

pubiflorum (Hook. f.) Lóve ssp. pubiflorum

ssp. halophilum (Griseb.) Lóve

pusillum (Nutt.) Lóve

santacrucense (Parodi et Nicora) Lóve

secalinum (Schreb.) Lóve

stenostachys (Godron) Lóve

andina Phil.

araucana Phil.

aureofulva Desv.

californica Boland. var. americana (Scribn.)

Hitchc.

calva Phil.

chilensis Desv. var. chilensis

var. glabrifolia Nicora

collina Phil.

malacantha (Steud.) Pilger ex Werd.

octoflora Phil.

oresigena Phil.

paschalis Pilger

Deschampsia

airaeformis (Steud.) Benth.

antarctica Desv.

atropurpurea (Wahlenb.) Scheele

berteroana (Kunth) Trin. var. berteroana

var. parvispicula Parodi

caespitosa (L.) P. Beauv. var. caespitosa

var. pulchra (Nees et Meyen) Nicora

danthonioides (Trin.) Munro ex Benth.

elongata (Hook.) Munro ex Benth.

flexuosa (L.) Trin.

kingii (Hook. f.) Desv.

laxa Phil. :

looseriana Parodi var. looseriana

var. triandra Parodi

monandra Parodi

parvula (Hook. f.) Desv.

patula (Phil.) Pilger ex Skottsb.

setacea (Hudson) Hackel

venustula Parodi

Desmazeria

* rigida (L.) Tutin

Cymbopogon

* citratus (DC.) Stapf

Cynodon Deyeuxia (Ver también Calamagrosts)

affinis Caro et Sánchez

aristulatus Caro et Sánchez

* dactylon (L.) Pers.

erectus J. Presl

nitidus Caro et Sánchez

pascuus Nees

86

antoniana (Griseb.) Parodi

alba J. Presl

arundinacea Phil.

breviaristata Wedd.

brevifolia J. Presl

chilensis Desv.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

chrysantha J. Presl

chrysostachya Desv.

curvula Wedd.

deserticola Phil.

eminens J. Presl

erythrostachya Desv. var. erythrostachya

var. neuquenensis Rúgolo

ligulata H.B.K.

nardifolia (Griseb.) Phil.

poaeformis Phil.

poaeoides (Steud.) Rúgolo

robusta Phil.

spiciformis (Hackel ex Stuck.) Túrpe

suka (Speg.) Parodi

velutina Nees et Meyen

viridiflavescens (Poir.) Kunth

viridis Phil.

Dichanthelium

sabulorum (Lam.) Gould et Clark

Dichelachne

micrantha (Cav.) Domin

sciurea (R. Br.) Hook. f.

Dielsiochloa

floribunda (Pilger) Pilger

Digitaria

* aequiglumis (Hackel et Arech.) Parodi

* horizontalis Willd.

* ischaemum (Schreb. ex Schweigg.) Schreb.

* sanguinalis (L.) Scop.

Diplachne

dubia (H.B.K.) Scribn.

uninervia (J. Presl) Parodi

Dissanthelium

calycinum (J. Presl) Hitchc.

Distichlis

hirta Phil.

humilis Phil.

scoparia (Kunth) Arech.

spicata (L.) Greene var. spicata

var. stricta (Torr.) Beetle

Echinochloa

* colonum (L.) Link

* crusgalli (L.) P. Beauv. var. crusgalli

var. mitis (Pursh) Peterm.

var. zelayensis (H.B.K.) Hitchc.

* polystachya (H.B.K.) Hitchc.

87

Ehrharta

Eleusine

* indica (L.) Gaertn.

* tristachya (Lam.) Lam.

Elymus

agropyroides J. Presl

asper Nees ex Steud.

chonoticus Phil.

erianthus Phil.

fuegianus (Speg.) Lóve

gayanus Desv.

magellanicus (Desv.) Lóve

muticus Phil.

notius Lóve

oreophilus Phil.

palenae Phil.

patagonicus Speg.

pratensis Phil.

remotiflorus (Parodi) Lóve

rigescens Trin.

scabriglumis (Hackel) Lóve

uniflorus Phil.

vaginatus Phil.

Elytrigia

k

repens (L.) Nevski

Enneapogon

desvauxii P. Beauv.

Eragrostis

attenuata Hitchc.

curvula (Schrad.) Nees

kuschelii Skottsb. ex Kuschel

elongata Jacq.

mexicana (Hornem.) Link

nigricans (H.B.K.) Steud.

peruviana (Jacq.) Trin.

polytricha Nees

vallensis (Schrad. ex Schult.) Schult.

virescens J. Presl

Eriochloa

* montevidensis Griseb.

* punctata (L.) A.N. Desv. ex Hamilt.

Eustachys

* distichophylla (Lag.) Nees

Festuca

acanthophylla Desv.

argentina (Speg.) Parodi

arundinacea Schreb.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

chrysophylla Phil. condensata Steud.

cirrosa (Speg.) Parodi cylindrica (L.) Raeuschel

contracta Kirk parodii Acev.

deserticola Phil. Kona

gracillima Hook. f.

hypsophila Phil. fueguina Cald. ex Nicora

juncifolia St.-Amans micrathera (Desv.) Griseb.

kurtziana St.-Yves trachyantha Phil.

magellanica Lam. Lachnagrostis

magensiana Potztal

monticola Phil.

morenensis Matthei Lagurus

nardifolia Griseb.

orthophylla Pilger

pallescens (St.-Yves) Parodi Lamarckia

panda Swallen * aurea (L.) Moench

purpurascens Banks et Soland. ex Hook. f.

pyrogea Speg.

filiformis (G. Forster) Trin.

* ovatus L.

Leptochloa (Ver Diplachne)

abra Leptophyllochloa

scabriuscula Phil. micranthera (Desv.) Cald. ex Nicora

tectoria St.-Yves Leymus

* tenuifolia Sibth.

thermarum Phil.

tunicata Desv. Lolium

werdermanil St.-Yves *

* arenarius (L.) Hochst.

multiflorum Lam.

Gastridium + perenne'LE.

* phleoides (Nees et Meyen) Hubb * rigidum Gaudin ssp. lepturoides (Boiss.) Senn. et

* ventricosum (Gouan) Schinz et Thell. Maur.

subulatum Vis.

temulentum L.

X *

Glyceria

* fluitans (L.) R. Br.

multiflora Steud Lophochloa

| * cristata (L.) Hy]l.

Gymnachne

koelerioides (Trin.) Parodi Megalachne

berteroniana Steud.

e masafuerana (Skottsb. et Pilger ex Pilger)

* sagittatum (Aubl.) P. Beauv. Matthei

Hainardia Melica

* cylindrica (Willd.) Greuter alata Nees ex Steud. var. alata

Helictotrichon Nal mollis Papp

] ' ampla Phil.

bulbosum (Hitchc.) Parodi argentata Desv. var. argentata

Hierochloe (Ver Anthoxanthum) var. breviglumis Papp

Holcus berteroana Phil. var. berteroana

var. exaltata (Phil.) Papp

* lanatus L. -

var. pilosula Papp

Hordeum (Ver también Critesion) var. puberula Papp

* vulgare L. chilensis J. Presl

flava Nees ex Steud. var. flava

Imperata var. violacea Papp

brasiliensis Trin. laxiflora Cav. var. laxiflora

88

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

var. hirta (Phil.) Papp

var. longiflora (Steud.) Papp

var. pilosula Papp

litoralis Phil. var. litoralis

var. paulsenii (Phil.) Papp

var. werdermannii Papp

mollis Phil.

nitida Phil.

poecilantha Desv. var. poecilantha

var. umbrosa Desv.

tortuosa Phil.

violacea Cav. var. violacea

var. argentata Papp

var. commersonil (Nees ex Steud.) Papp

var. commutata (Steud.) Papp

var. glabrior Papp

var. palida Desy.

weberbaueri Pilger var. talcahuanoensis Papp

Melinis

* minutiflora P. Beauv.

Microchloa

* indica (L.f) P. Beauv.

Microlaena

* stipoides (Labill.) R. Br.

Monerma (Ver Hainardia)

Monroa (Ver Munroa)

Munhlenbergia

asperifolia (Nees et Meyen ex Trin.) Parodi

fastigiata (J. Presl) Henr.

peruviana (P. Beauv.) Steud.

Munroa (17)

andina Phil.

decumbens Phil.

Nassella

asplundii Hitchc.

chilensis (Trin.) Desv.

exserta Phil. var. exserta

var. asperata Parodi

fuscescens Phil.

humilis Phil.

Jjohnstonii Parodi

juncea Phil.

meyeniana (Trin. et Rupr.) Parodi

pubiflora (Trin. et Rupr.) Desv.

pungens Desv.

Neobouteloua

lophostachya (Griseb.) Gould

89

Ortachne (Ver Stipa) (19)

Oryza

* sativa L.

Oryzopsis

* miliacea (L.) B. et H. ex Aschers. et Schweinf.

Panicum

* capillare L.

pencanum Phil.

urvilleanum Kunth

Parapholis

* incurva (L.) Hubb.

* strigosa (Dum.) Hubb.

Paspalum

dasypleurum Kunze ex Desv.

dilatatum Poir.

* distichum L.

forsterianum Flueggé

pumilum Nees

scrobiculatum L. var. orbiculare (G. Forster)

Hackel

vaginatum Sw.

Pennisetum

chilense (Desv.) Jacks. ex R.E. Fries

Phalaris

amethystina Trin.

angusta Nees ex Trin.

* aquatica L.

* caroliniana Walter

* minor Retz.

Phippsia (Ver Catabrosa)

Phleum

* alpinum L.

* pratense L.

Phragmites

australis (Cav.) Trin. ex Steud.

Piptochaetium

angolense Phil.

bicolor (Vahl) Desv.

hirtum Phil.

montevidense (Spreng.) Parodi

ovatum (Trin.) Desv.

panicoides (Lam.) Desv.

setosum (Trin.) Arech.

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

stipoides (Trin. et Rupr.) Hackel ex Arech. var.

stipoides

var. chaetophorum (Griseb.) Parodi

Poa

*

acinaciphylla Desv.

alopecurus (Gaud.) Kunth ssp. alopecurus

ssp. fuegiana (Hook. f.) D.M. Moore et Dogg.

ampla Merr.

andina Trin.

annua L.

araucana Phil.

ariquensis Steud.

atacamensis Parodi

atropidiformis Hackel

ayseniensis Hackel

bonariensis (Lam.) Kunth

borchersii Phil.

chiloensis Phil.

chonotica Phil.

chorizantha Desv.

conceptionis Steud.

conformis Nees ex Steud.

cumingii Nees

danthonioides Steud.

darwiniana Parodi

denudata Steud.

dialystostachya Phil.

eligulata Hackel

eremophila Phil.

flabellata (Lam.) Raspail

fulvescens Trin.

gayana Desv.

glauca Vahl

gymnantha Pilger

hachadoensis Nicora var. hachadoensis

holciformis J. Presl

ibari Phil.

Julietii Phil.

lanuginosa Poir.

lepida Nees ex Steud., non Rich.

magensiana Potztal

modesta Phil., non Tuckerm. (18)

nemoralis L.

oligeria Steud.

palustris L.

patagonica Phil. var. patagonica

phalaroides Nees ex Steud.

philippii Steud.

poecila Phil.

pratensis L.

pumila Phil.

pycnantha Phil.

rigidifolia Steud.

robusta Steud.

scaberula Hook. f.

schoenoides Phil.

secunda J. Presi.

shuka (Speg.) Parodi

stachyoides Phil.

stenantha Trin.

subenervis Hackel ex Dusén

superbiens (Steud.) Haum. et Parodi

taltalensis Pilger ex Werd.

trachyantha Hackel

tricolor Nees ex Steud.

tristigmatica Desv.

trivialis L.

tumidula Steud.

valdiviana Phil.

yaganica Speg.

*

Podagrostis

sesquiflora (Desv.) Nicora

Podophorus

bromoides Phil.

Polypogon

australis Brongn.

interruptus H.B.K.

linearis Trin.

lutosus (Poir.) Hitchc.

maritimus Willd.

monspeliensis (L.) Desf.

semiverticillatus (Forsk.) Hy]l.

X *

*

Puccinellia

biflora (Steud.) Parodi

frigida (Phil.) Johnst.

glaucescens (Phil.) Parodi

hypsophila (Phil.) Parodi ex Esp.

johnstonii Muñoz

laxa (Pilger) Parodi

magellanica (Hook. f.) Parodi

oresigena (Phil.) Hitchc.

pusilla (Hackel) Parodi

tenuifolia (J. Presl) Parodi

Relchela

panicoides Steud.

Rhombolytrum

rhomboidea Link

Rytidosperma

glabra (Phil.) Nicora

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

picta (Nees et Meyen) Nicora var. picta

violacea (Desv.) Nicora

virescens (Desv.) Nicora var. virescens

Saccharum

* officinarum L.

Schismus

* arabicus Nees

* barbatus (L.) Thell.

Schizachyrium

* sanguineum (Retz.) Alston

* scoparium (Michx.) Nash

Scleropoa (Ver Desmazeria)

Scleropogon

brevifolius Phil.

Secale

* cereale L.

Setaria

* geniculata (Lam.) P. Beauv.

* verticillata (L.) P. Beauv.

* viridis (L.) P. Beauv.

Sorghum

* bicolor (L.) Moench

* halepense (L.) Pers. fma. halepense

fma. muticum (Hackel) Hayek

* sudanense (Piper) Stapf

Spartina

densiflora Brongn.

Sporobolus

* indicus (L.) R. Br.

rigens (Trin.) Desv.

* virginicus (L.) Kunth

Stenotaphrum

* secundatum (Walter) O.K.

Stipa

annua Mez

arcuata R.E. Fries

atacamensis Parodi

bertrandii Phil.

bomanii Haum.

brevipes Desv.

breviseta (Hitchc.) Martic. et Quez. (19)

caudata Trin.

chrysophylla Desv.

coquimbensis Matthei

duriuscula Phil.

featherstonei Hitchc.

filiculmis Del.

frigida Phil.

hirtifolia Hitchc.

horridula Pilger

humilis Cav.

ibari Phil. var. ibari

lachnophylla Trin.

laevissima (Phil.) Speg.

leptostachya Griseb.

longiglumis Phil.

macrathera Phil.

manicata Desv.

nardoides (Phil.) Hackel ex Hitchc.

neaei Nees ex Steud.

neesiana Trin. et Rupr.

papposa Nees

parodii Matthei

pfisteri Matthei

philippii Steud.

poeppigiana Trin. et Rupr.

plumosa Trin.

pogonathera Desv.

psylantha Speg.

rariflora (Hook. f.) Benth.

rigidiseta (Pilger) Hitchc.

rupestris Phil.

speciosa Trin. et Rupr.

subaristata (Matthei) Caro

tenuis Phil.

tortuosa Desv.

vaginata Phil.

venusta Phil.

Trichloris

crinita (Lag.) Parodi

Trichoneura

weberbaueri Pilger

Tripogon

spicatus (Nees) Ekman

Trisetobromus (Ver Bromus)

Trisetum

barbinode Trin.

caudulatum Trin. var. caudulatum

cernuum Trin.

cumingil (Nees) Nicora var. cumingii

hirtiflorum Hackel

lasiolepis Desv.

laxiflorum Phil

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

lechleri (Steud.) Nicora

longiglume Hackel var. longiglume

mollifolium Louis-Marie

monticola Phil.

preslei (Kunth) Desv. var. preslei

var. buchtienii (Hackel) Louis-Marie

var. lasianthum (Phil.) Louis-Marie

rigidulum (Steud.) Domin

spicatum (L.) Richt. var. spicatum

var. dianthemum Louis-Marie

var. fuegianum (Hackel) Louis-Marie

splendidulum Steud.

tomentosum (Desv.) Nicora

variabile Desv. var. variabile

var. chiloense (Phil.) Louis-Marie

var. flavescens Desv.

var. intonsum Louis-Marie

Triticum

* aestivum L.

Vulpia

antofagastensis Parodi

australis (Nees) Blom var. nana (Hieron.) Parodi

* bromoides (L.) S.F. Gray

eriolepis (Desv.) Blom

* myuros (L.) C.C. Gmel.

Zea

* mays L.

HYDROCHARITACEAE

Egeria

* densa Planch.

Elodea

* canadensis Michx.

potamogeton (Bert.) Esp.

Hydromystria (Ver Limnobium)

Limnobium

* laevigatum (H. et B. ex Willd.) Heine

IRIDACEAE

Calydorea

xyphioides (Poepp.) Esp.

Chamelum

frigidum (Poepp.) Ravenna

92

Herbertia

lahue (Mol.) Goldbl.

Libertia

chilensis (Mol.) Gunckel

elegans Poepp.

sessiliflora (Poepp.) Skottsb.

tricocca Phil.

Mastigostyla

gracilis R.C. Foster

Ona (Ver Tapemaia)

Phaiophleps

biflora (Thunb.) R.C. Foster ssp. biflora

ssp. lyckholmii (Dusén) D.M. Moore

nigricans (Phil.) R.C. Foster

Sisyrinchium

arenarium Poepp.

azureum Phil.

chilense Hook.

cuspidatum Poepp.

graminifolium Lindl.

junceum E. Mey. ex K. Presl

nanum Phil.

patagonicum Phil. ex Baker

pearcel Phil.

philippi Klatt

scirpoideum Poepp.

striatum J.E. Sm.

trinerve Baker

Solenomelus

pedunculatus (Gill. ex Hook.) Hochr.

sisyrinchium (Griseb.) Pax ex Diels

Tapeinia

obscura (Cav.) D.M. Moore

pumila (Hook. f.) Baillon

Tigridia

philippiana Johnst

Tritonia

* x crocosmiflora (Lemoine) Nichols.

JUNCACEAE

Distichia

filamentosa (Buch.) Griseb.

muscoides Nees et Meyen

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Juncus

acuminatus Michx. var. acuminatus

var. multiceps (Kunze ex Kunth) Barros

acutus L. var. effusus Buch.

var. leopoldi (Parlat.) Buch.

austerus Buch.

balticus Willd. var. crassiculmis Buch. ex Griseb.

var. mexicanus (Willd.) O.K.

var. montanus Engelm.

bufonius L. var. bufonius

var. condensatus Cout.

var. pumilio Griseb.

bulbosus L.

capillaceus Lam.

capitatus Weigel

chilensis Gay

cyperoides Lah.

dichotomus Elliot

diemi Barros

dombeyanus J. Gay ex Lah. var. dombeyanus

var. elatus Buch.

effusus L. var. effusus

var. compactus Lej. et Court.

ernesti-barrosii Barros

filiformis L.

imbricatus Lah. var. chamissonis (Kunth) Buch.

involucratus Steud. ex Buch.

leersiiz Marsson

lesueuri Boland. var. lesueuri

var. stenocaulon Buch.

llanquihuensis Barros

mendocinus Barros

microcephalus H.B.K. var. microcephalus

var. floribundus (H.B.K.) Kunth

var. intermedius Kunth

planifolius R. Br. var. planifolius

var. demissus (Steud.) Buch.

plebeius R. Br.

procerus E. Mey

scheuchzerioides Gaud.

stipulatus Nees et Meyen

tenuis Willd. var. congestus Engelm. ex Buch.

Luzula

alopecurus A.N. Desy.

campestris (L.) DC. var. tristachya (A.N.Desyv.)

Buch.

chilensis Nees et Meyen ex Kunth fma. chilensis

fma. frequentior Barros

correae Barros

leiboldii Buch.

masafuerana Skottsb.

racemosa A.N. Desv. var. racemosa

93

Marsippospermum

grandiflorum (L.f.) Hook. f.

philippii (Buch.) Haum.

reichei Buch.

Oxychloe

andina Phil.

Patosia

clandestina (Phil.) Buch.

Rostkovia

magellanica (Lam.) Hook. f.

JUNCAGINACEAE

Tetroncium

magellanicum Willd.

Triglochin

concinna Davy

palustris L.

striata R. et P.

LEMNACEAE

Lemna

gibba L.

minima Phil.

minor L.

valdiviana Phil.

Spirodela

punctata (G. Mey.) Thomps.

Wolffiella

oblonga (Phil.) Hegelm.

LILAEACEAE

Lilaea

scilloides (Poir.) Haum.

LILIACEAE

Allium

Ancrumia

cuspidata Harv. ex Baker

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Astelia

pumila (G. Forster) R. Br.

Bottionea (Ver Trichopetalum)

Brodiaea

porrifolia (Poepp.) Meigen

Camassia

biflora (R. et P.) Coc.

Erinna

gilliesioides Phil.

Fortunatia (Ver Camassta)

Garaventia

graminifolia (F. Phil.) Looser

Gethyum

atropurpureum Phil.

Gilliesia

gaudichaudiana Kunth

graminea Lindl.

monophylla Reiche

montana P. et E.

Herreria

stellata R. et P.

Ipheion

sessile (Phil.) Traub.

Leucocoryne

alliacea Lindl.

angustipetala Gay

appendiculata Phil.

conferta Zoell.

coquimbensis F. Phil. var. coquimbensis

var. alba Zoell.

ixioides (Hook.) Lindl.

macropetala Phil.

odorata Lindl.

pauciflora Phil.

purpurea Gay

violacescens Phil.

Miersia

chilensis Lindl.

Nothoscordum

bivalve (L.) Britton

* inodorum (Soland. ex Aiton) Nichols.

mahui Traub

nublense Ravenna

94

serenense Ravenna

striatellum (Lindl.) Kunth

Pabellonia

incrassata (Phil.) Quez. et Martic.

oxypetala (Phil.) Quez. et Martic.

Pasithea

coerulea (R. et P.) D. Don var. coerulea

var. grandiflora Johnst.

Solaria

miersioides Phil.

Speea

humilis (Phil.) Loes. ex Krause

Trichopetalum

plumosum (R. et P.) Macbr.

stellatum Lindl.

Tristagma

berteri Phil.

bivalve (Lindl.) Traub

nivale Poepp. fma. nivale

fma. australe (Neger ex Dusén) Ravenna

Zoellnerallium

andinum (Poepp.) Crosa

ORCHIDACEAE

Aa

nervosa (Kraenzl.) Schlechter

Bipinnula

fimbriata (Poepp.) Johnst.

plumosa Lindl.

taltalensis Johnst.

volckmannii Kraenzl.

Brachystele

unilateralis (Poir.) Schlechter

Chloraea

alpina Poepp.

barbata Lindl.

bidentata (Poepp.) Correa

bletioides Lindl.

chica Speg. et Kraenzl.

chrysantha Poepp.

crispa Lindl.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

cristata Lindl. PHILESIACEAE

cuneata Lindl.

cylindrostachya Poepp. Lapageria

disoides Lindl. var. disoides

: , y rosea R. et P.

var. picta (Phil. ex Kraenzl.) Correa a K.e

galeata Lindl. Luzuriaga

gaudichaudii Brongn. marginata (Banks et Soland. ex Gaertn.) Benth.

gavilu Lindl. polyphylla (Hook.) Macbr.

grandiflora Poepp. radicans R. et P.

heteroglossa Reichenb. f. Es

lamellata Lindl. Phulesia

lechleri Lindl. ex Kraenzl. magellanica J.F. Gmel.

longipetala Lindl.

magellanica Hook. f.

multiflora Lindl.

nudilabia Poepp.

philippii Reichenb. f.

prodigiosa Reichenb. f.

speciosa Poepp.

virescens (Willd.) Lindl.

viridiflora Poepp.

volckmannii Phil. ex Kraenzl. POTAMOGETONACEAE

Codonorchis

lessonii (Brongn.) Lindl.

PONTEDERIACEAE

Eichhornia

* crassipes (Mart.) Solms-Laub.

Potamogeton

berteroanus Phil.

linguatus Hagstr.

es lucens L.

araucana (Phil.) Correa pectinatus L.

australis (Skottsb.) Correa reniacoensis Sparre

cardioglossa (Reiche) Correa striatus R. et P.

glandulifera (Poepp.) Correa strictus Phil.

insularis Correa

kingii (Hook. f.) Correa

leucantha Poepp.

littoralis (Phil.) Correa RESTIONACEAE

longibracteata (Lindl.) Sparre ex Navas

lutea (Pers.) Correa Leptocarpus

odoratissima Poepp. chilensis (Gay) Masters

Habenaria

paucifolia Lindl. RUPPIACEAE

Ruppia

filifolia (Phil.) Skottsb.

maritima L.

PALMAE

Juania

australis (Mart.) Drude ex Hook. f. TECOPHILAEACEAE

Jubaea Conanthera

chilensis (Mol.) Baillon bifolia R. et P.

95

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

campanulata (D. Don) Lindl. TYPHACEAE

johowii Esp. Typha

minima Grau

simsil Sweet

trimaculata (D. Don) Meigen

angustifolia L.

dominguensis Pers.

ZANNICHELLIACEAE

Tecophilaea

Zannichellia

cyanocrocus Leyb.

violiflora Bert. ex Colla fma. violiflora

fma. polyantha Skottsb.

palustris L.

ZOSTERACEAE

Zephyra Heterozostera

elegans D. Don tasmanica (Martens ex Aschers.) Den Hartog

96

Lista de familias,

número de géneros

y número de especies

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA y M. QUEZADA

PTERIDOPHYTA

ADIANTACEAE

Adiantum

Cheilanthes

Cryptogramma

Notholaena

Pellaea

Pteris

Trismeria

ASPIDIACEAE

Ctenitis

Polystichum

Rumohra

ASPLENIACEAE

Asplenium

Pleurosorus

ATHYRIACEAE

Cystopteris

Diplazium

Woodsia

AZOLLACEAE

Azolla

BLECHNACEAE

Blechnum

Doodia

DAVALIACEAE

Arthropteris

Davallia

DENNSTAEDTIACEAE

Dennstaedtia

Histiopteris

Hypolepis

Microlepia

DICKSONIACEAE

Dicksonia

+ += Q9 Q)

A

(29)

(12)

(14)

(2)

(4)

99

EQUISETACEAE

Equisetum

GLEICHENIACEAE

Gleichenia

GRAMMITIDACEAE

Grammitis

Xiphopteris

HYMENOPHYLLACEAE

Hymenoglossum

Hymenophyllum

Serpyllopsis

Trichomanes

ISOETACEAE

Isoetes

LOMARIOPSIDACEAE

Elaphoglossum

LOPHOSORIACEAE

Lophosoria

LYCOPODIACEAE

Huperzia

Lycopodium

MARSILEACEAE

Marsilea

Pilularia

OPHIOGLOSSACEAE

Botrychium

Ophioglossum

POLYPODIACEAE

Phymatosorus

Pleopeltis

Polypodiurn

HD o — Q9

(2)

(4)

(25)

(1)

(8)

(2)

(8)

(6)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

PSILOTACEAE

Psilotum

SALVINIACEAE

Salvinia

SCHIZAEACEAE

Schizaea

ARAUCARIACEAE

Araucaria

CUPRESSACEAE

Austrocedrus

Fitzroya

Pilgerodendron

EPHEDRACEAE

Ephedra

1 (1) SELAGINELLACEAE

1 Selaginella

1 (1) THELYPTERIDACEAE

1 Thelypteris

1 (1) THYRSOPTERIDACEAE

l Thyrsopteris

VITTARIACEAE

Vittaria

GYMNOSPERMAE

(1) PINACEAE

1 Pinus

a PODOCARPACEAE

l Dacrydium

( Podocarpus

Prumnopitys

Saxe-gothaea

1 (7)

100

e —

NO

(1)

(4)

(1)

(5)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

ANGIOSPERMAE-DICOTYLEDONEAE

ACANTHACEAE

Dicliptera

Stenandrium

AEXTOXICACEAE

Aextoxicon

AIZOACEAE

Carpobrotus

Glinus

Mesembryanthemum

Tetragonia

AMARANTHACEAE

Alternanthera

Amaranthus

Gomphrena

ANACARDIACEAE

Haplorhus

Lithrea

Schinus

APOCYNACEAE

Elytropus

Skytanthus

Vinca

ARALIACEAE

Pseudopanax

ARISTOLOCHIACEAE

Aristolochia

ASCLEPIADACEAE

Asclepias

Astephanus

Cynanchum

Diplolepis

Philibertia

Tweedia

BALANOPHORACEAE

Ombrophytum

— pi >= 0

pá

(2)

(1)

(13)

(9)

(11)

(3)

(2)

(17)

(1)

101

BERBERIADACEAE

Berberis

BETULACEAE

Alnus

BIGNONIACEAE

Argylia

Campsidium

Eccremocarpus

Tecoma

BORAGINACEAE

Amsinckia

Anchusa

Borago

Cordia

Cryptantha

Cynoglossum

Echium

Heliotropium

Myosotis

Nesocaryum

Pectocarya

Plagiobothrys

Selkirkia

Tiquilia

BUDDLEJACEAE

Buddleja

CACTACEAE

Acanthocalycium

Arequipa

Austrocactus

Austrocylindropuntia

Browningia

Copiapoa

Corryocactus

Erdisia

Eriosyce

Eulychnia

Haageocereus

Helianthocereus

Maihuenia

50

OL JH — 00

a

21

— +=— Nh n

40

pd o o Y 2 OY NY

(50)

(1)

(14)

(113)

(2)

(150)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Neoporteria

Neowerdermannia

Opuntia

Oreocereus

Reicheocactus

Soehrensia

Tephrocactus

Trichocereus

CAESALPINIACEAE

Balsamocarpon

Caesalpinia

Hoffmanseggia

Senna

Zuccagnia

CALLITRICHACEAE

Callitriche

CALYCERACEAE

Boopis

Calycera

Gamocarpha

Moschopsis

Nastanthus

CAMPANULACEAE

Cyphocarpus

Downingia

Hypsela

Legenere

Lobelia

Pratia

Triodanis

Wahlenbergia

CAPPARACEAE

Cleome

CAPRIFOLIACEAE

Sambucus

CARICACEAE

Carica

CARYOPHYLLACEAE

Agrostemma

Arenaria

Cardionema

Cerastium

Colobanthus

GU

-]

pa

00 UU -=» += .N — —

pu

N 09 09 00

(23)

(92)

102

Corrigiola

Drymaria

Herniaria

Honkenya

Lychnis

Microphyes

Minuartia

Paronychia

Petrorhagia

Philippiella

Polycarpon

Pycnophyllum

Reicheella

Sagina

Sanctambrosia

Saponaria

Scleranthus

Silene

Spergula

Spergularia

Stellaria

CELASTRACEAE

Maytenus

CERATOPHYLLACEAE

Ceratophyllum

CHENOPODIACEAE

Atriplex

Bassia

Chenopodium

Nitrophila

Salsola

Sarcocornia

Suaeda

COMPOSITAE

Abrotanella

Achillea

Achyrocline

Adenocaulon

Ageratum

Agoseris

Amblyopappus

Ambrosia

Anaphalis

Antennaria

Anthemis

Aphyllocladus

Arctium

Arctotheca

pd.

RN == == =— 09 = QU == = N 0H 09 N nm mm 09 09

-——

00m so

157

- == -N-n qpr>nNn* $

(4)

(1)

(57)

(932)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

ÁArnica | Gochnatia

Artemisia 3 Grindelia

Aster 3 Guuierrezia

Baccharis 2 Gypothamnium

Bahia Haplopappus

Bellis | Hedypnois

Belloa 5 Helenium

Bidens 4 Helianthus

Blennosperma | Helogyne

Brachyclados l Heterosperma

Calendula 2 Hieracium

Calopappus l Hinterhubera

Carduus 2 Hypochaeris

Carthamus 2 Hysterionica

Centaurea 11 Lactuca

Centaurodendron 2 Lagenifera

Centipeda l Lapsana

Chaetanthera 36 Lasthenia

Chamomilla 2 Leontodon

Chaptalia l Lepidophyllum

Chersodoma 3 Leptocarpha

Chevreulia 3 Leucanthemum

Chiliophyllum 2 Leucheria

Chiliotrichum 2 Leunisia

Chrysanthemoides 1 Lophopappus

Chrysanthemum l Lucilia

Chuquiraga 6 Luciliopsis

Cichorium 1 Lycapsus

Cirsium 2 Macrachaenium

Cnicus 1 Madia

Coleostephus l Malacothrix

Conyza 25 Marticorenia

Coreopsis l Matricaria

Cotula 4 Micropsis

Crepis 3 Microseris

Cynara 1 Mikania

Dasyphyllum 2 Mniodes

Dendroseris 11 Moscharia

Diplostephium 3 Muuisia

Doniophyton Z Nardophyllum

Eclipta 1 Nassauvia

Encelia 1 Noticastrum

Erechtites l Onopordum

Eriachaenium 1 Ophryosporus

Erigeron 17 Oxyphyllum

Eupatorium 2 Pachylaena

Facelis 2 Parastrephia

Filago 1 Parthenium

Flaveria l Perezia

Flourensia 1 Perityle

Galinsoga 2 Picris

Gamochaeta 19 Picrosia

Gnaphalium 31 Piqueria

pd o pu pod pu pu OD PD Ah

ns

N a a A AA pu pu NOD IND io pd pd fo pd pe O

100] 150]

Ha Ot 09

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OD ma mo ps

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Plazia

Pleocarphus

Pluchea

Podanthus

Polyachyrus

Proustia

Psilocarphus

Rhetinodendron

Robinsonia

Schkuhria

Scolymus

Senecio

Sigesbeckia

Silybum

Solidago

Soliva

Sonchus

Spilanthes

Stevia

Tagetes

Tanacetum

Taraxacum

Tessaria

Thamnoseris

Tragopogon

Trichocline

Triptilion

Trixis

Urmenetea

Urospermum

Verbesina

Viguiera

Villanova

Wedelia

Werneria

Xanthium

Yunquea

CONVOLVULACEAE

Calystegia

Convolvulus

Cressa

Dichondra

Evolvulus

Ipomoea

CORIARIACEAE

Coriaria

CORNACEAE

Griselinia

== NO —- -=0Q0€Nym o N

222

ok

E

= 09 09 = oN JN am om Ba Jo oh 09 N HB 09 +; N mm

(13)

(1)

(4)

104

CRASSULACEAE

Crassula

Sedum

CRUCIFERAE

Agallis

Alyssum

Barbarea

Brassica

Capsella

Cardamine

Cardaria

Coronopus

Crambe

Cremolobus

Descurainia

Diplotaxis

Draba

Eremodraba

Erophila

Eruca

Eudema

Grammosperma

Hesperis

Hollermayera

Hymenolobus

Isatis

Ivania

Lepidium

Lobularia

Mancoa

Mathewsia

Menonvillea

Nasturtium

Neuontobothrys

Onuris

Phlebiophragmus

Raphanus

Rapistrum

Rorippa

Schizopetalon

Sisymbrium

Stenodraba

Thlaspi

Weberbauera

Werdermannia

Xerodraba

CUCURBITACEAE

Sicyos

a

N

—

N

al

N

Du —- NH NnN0auawr- oqoN

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0

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(8)

(176)

(1)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

CUNONIACEAE

Caldcluvia

Weinmannia

CUSCUTACEAE

Cuscuta

DESFONTAINIACEAE

Desfontainia

DIPSACACEAE

Dipsacus

Scabiosa

DONATIACEAE

Donatia

DROSERACEAE

Drosera

ELAEOCARPACEAE

Aristotelia

Crinodendron

ELATINACEAE

Elatine

EMPETRACEAE

Empetrum

EPACRIDACEAE

Lebetanthus

ERICACEAE

Gaultheria

Pernettya

EUCRYPHIACEAE

Eucryphia

EUPHORBIACEAE

Adenopeltis

Argythamnia

Avellanita

Colliguaja

Croton

Dysopsis

Eremocarpus

¡5

n

(2)

(10)

(1)

(3)

(1)

(2)

(43)

Euphorbia

Ricinus

FAGACEAE

Nothofagus

FLACOURTIACEAE

Azara

Berberidopsis

FRANKENIACEAE

Anthobryum

Frankenia

FUMARIACEAE

Fumaria

GENTIANACEAE

Centaurium

Cicendia

Gentiana

Gentianella

GERANIACEAE

Erodium

Geranium

GESNERIACEAE

Asteranthera

Mitraria

Sarmienta

GOMORTEGACEAE

Gomortega

GOODENIACEAE

Selliera

GUNNERACEAE

Gunnera

HALORAGACEAE

Haloragis

Myriophyllum

HIPPURIDACEAE

Hippuris

HYDRANGEACEAE

Hydrangea

pl pa += QD

A 10)

(10)

(9)

(13)

(26)

(1)

(12)

(4)

(1)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

HYDROPHYLLACEAE

Nama

Phacelia

HYPERICACEAE

Hypericum

ICACINACEAE

Citronella

KRAMERIACEAE

Krameria

LABIATAE

Cuminia

Glechoma

Kurzamra

Lamium

Marrubium

Melissa

Mentha

Prunella

Salvia

Satureja

Scutellaria

Sphacele

Stachys

Teucrium

LACTORIDACEAE

Lactoris

LARDIZABALACEAE

Boquila

Lardizabala

LAURACEAE

Beilschmiedia

Cryptocarya

Persea

LEDOCARPACEAE

Balbisia

Wendtia

LENTIBULARIACEAE

Pinguicula

Utricularia

pun

N

——

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pum. pod

N —= N. 0

(8)

(1)

(2)

(38)

(1)

(2)

(4)

(3)

106

LINACEAE

Cliococca

Linum

LOASACEAE

Caiophora

Loasa

Mentzelia

Scyphanthus

LORANTHACEAE

Desmaria

Eremolepis

Lepidoceras

Ligaria

Notanthera

Tristerix

LYTHRACEAE

Lythrum

Peplis

Pleurophora

MALESHERBIACEAE

Malesherbia

MALPIGHIACEAE

Dinemagonum

Dinemandra

MALVACEAE

Anoda

Corynabutilon

Cristaria

Gossypium

Lavatera

Malacothamnus

Malva

Malvastrum

Malvella

Modiola

Nototriche

Palaua

Sida

Sphaeralcea

Tarasa

Thespesia

Urocarpidium

MIMOSACEAE

Acacia

(6).

(66)

(8)

(7)

(18)

(5)

(130)

(16)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Albizzia

Calliandra

Prosopis

MISODENDRACEAE

Misodendrum

MONIMIACEAE

Laurelia

Peumus

MORACEAE

Broussonetia

MYRICACEAE

Myrica

MYRTACEAE

Amomyrtus

Blepharocalyx

Legrandia

Luma

Myrceugenia

Myrteola

Reichea

Tepualia

Ugni

NOLANACEAE

Alona

Nolana

NYCTAGINACEAE

Allionia

Boerhavia

Oxybaphus

NYMPHAEACEAE

Nymphaea

OLEACEAE

Menodora

ONAGRACEAE

Boisduvalia

- Camissonia

Clarkia

Epilobium

Fuchsia

Gayophytum

BN — 0)

—

N N N == —= == 00

(9)

(1)

(28)

(42)

(38)

107

Ludwigia

Oenothera

OROBANCHACEAE

Orobanche

OXALIDACEAE

Oxalis

PAPAVERACEAE

Argemone

Eschscholzia

PAPILIONACEAE

Adesmia

Anarthrophyllum

Astragalus

Crotalaria

Cytisus

Dalea

Desmodium

Dolichos

Errazurizia

Galega

Geoffroea

Glycyrrhiza

Indigofera

Lathyrus

Lotus

Lupinus

Medicago

Melilotus

Ornithopus

Psoralea

Rhynchosia

Sophora

Spartium

Teline

Trifolium

Trigonella

Ulex

Vicia

PASSIFLORACEAE

Passiflora

PHYTOLACCACEAE

Anisomeria

Ercilla

Phytolacca

46

N

pr.

09 OS

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(115)

(323)

(2)

(5)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

PIPERACEAE

Peperomia

PLANTAGINACEAE

Littorella

Plantago

PLUMBAGINACEAE

Armeria

Limonium

Plumbago

POLEMONIACEAE

Collomia

Gilia

Ipomopsis

Linanthus

Microsteris

Navarretia

Polemonium

POLYGALACEAE

Monnina

Polygala

POLYGONACEAE

Bilderdykia

Chorizanthe

Koenigia

Lastarriaea

Muehlenbeckia

Oxytheca

Polygonum

Rumex

PORTULACACEAE

Calandrinia

Lenzia

Monocosmia

Montia

Philippiamra

Portulaca

PRIMULACEAE

Anagallis

Androsace

Lysimachia

Pelletiera

Primula

Samolus

N a —

Ah a - == —- 09 Q

(11)

(12)

(56)

(79)

(11)

PROTEACEAE

Embothrium

Gevuina

Lomatia

Orites

RAFFLESIACEAE

Pilostyles

RANUNCULACEAE

Anemone

Barneoudia

Caltha

Clematis

Hamadryas

Myosurus

Ranunculus

RESEDACEAE

Reseda

RHAMNACEAE

Colletia

Condalia

Discaria

Retanilla

Rhamnus

Talguenea

Trevoa

ROSACEAE

Acaena

Aphanes

Duchesnea

Fragaria

Geum

Kageneckia

Lachemilla

x Margyracaena

Margyricarpus

Polylepis

Potentilla

Quillaja

Rosa

Rubus

Sanguisorba

Tetraglochin

RUBIACEAE

Coprosma

Cruckshancksia

108

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22

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(6)

(1)

(41)

(2)

(20)

(52)

(41)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Galium

Hedyotis

Leptostigma

Nertera

Oreopolus

Relbunium

Rubia

Sherardia

RUTACEAE

Fagara

Pitavia

Ruta

SALICACEAE

Salix

SANTALACEAE

Arjona

Myoschilos

Nanodea

Quinchamalium

Santalum

SAPINDACEAE

Bridgesia

Dodonaea

Guindilia

Llagunoa

Sapindus

SAPOTACEAE

Pouteria

SAXIFRAGACEAE

Chrysosplenium

Escallonia

Francoa

Lepuropetalon

Ribes

Saxifraga

Saxifragella

Saxifragodes

Tetilla

Tribeles

Valdivia

SCROPHULARIACEAE

Agalinis

Alonsoa

Bacopa

Bartsia

gc

-

pu pu DQO) to pu ps

mm. N - € 0

—

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Ha + $e e > (QU

(8)

(165)

Bellardia

Calceolaria

Castilleja

Cymbalaria

Digitalis

Euphrasia

Fonkia

Gratiola

Hebe

Jovellana

Kickxia

Limosella

Linaria

Lindernia

Melosperma

Mimulus

Monttea

Orthocarpus

Ourisia

Parentucellia

Scrophularia

Stemodia

Verbascum

Veronica

SIMAROUBACEAE

Ailanthus

SOLANACEAE

Benthamiella

Cacabus

Cestrum

Combera

Datura

Dunalia

Fabiana

Grabowskia

Jaborosa

Latua

Lycium

Lycopersicon

Nicandra

Nicotiana

Nierembergia

Petunia

Phrodus

Physalis

Reyesia

Salpichroa

Salpiglossis

Schizanthus

Solanum

Trechonaetes

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(1)

(145)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Vestia

STERCULIACEAE

Waltheria

STYLIDIACEAE

Phyllachne

TETRACHONDRACEAE

Tetrachondra

THYMELAEACEAE

Drapetes

Ovidia

TILIACEAE

Triumfetta

TROPAEOLACEAE

Tropaeolum

UMBELLIFERAE

Ammi

Anethum

Anthriscus

Apium

Asteriscium

Azorella

Bolax

Bowlesia

Centella

Conium

Daucus

Diposis

Domeykoa

Eremocharis

Eryngium

Foeniculum

Gymnophyton

Homalocarpus

Huanaca

Hydrocotyle

Laretia

Lilaeopsis

Mulinum

Niphogeton

Oreomyrrhis

Osmorhiza

Pastinaca

Pozoa

Sanicula

Scandix

Seseli

p=

OQ == == 09 09 == HQ 0

—

— =D NN —

(18)

(140)

110

Smyrnium

Torilis

URTICACEAE

Boehmeria

Parietaria

Pilea

Soleirolia

Urtica

VALERIANACEAE

Plectritis

Stangea

Valeriana

Valerianella

VERBENACEAE

Acantholippia

Aloysia

Diostea

Glandularia

Junellia

Lampaya

Lippia

Phyla

Pitraea

Rhaphithamnus

Urbania

Verbena

VIOLACEAE

Hybanthus

Viola

VITACEAE

Cissus

VIVIANIACEAE

Araeoandra

Cissarobryon

Viviania

WINTERACEAE

Drimys

ZYGOPHYLLACEAE

Bulnesia

Fagonia

Larrea

Metharme

Pintoa

Porlieria

Tribulus

== += NN Q — QU

—

N VD — -—- Q)

+ e A A QQ NN —= ==

(18)

(47)

(89)

(73)

(2)

(10)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

ANGIOSPERMAE-MONOCOTYLEDONEAE

ALISMATACEAE

Alisma

Sagittaria

AMARYLLIDACEAE

Alstroemeria

Bomarea

Famatina

Hippeastrum

Leontochir

Rhodophiala

Placea

Traubia

APONOGETONACEAE

Aponogeton

ARACEAE

Pistia

BROMELIACEAE

Deuterocohnia

Fascicularia

Greigia

Ochagavia

Puya

Tillandsia

CENTROLEPIDACEAE

Gaimardia

CORSIACEAE

Arachnitis

CYPERACEAE

Bulbostylis

Carex

Carpha

Cyperus

Eleocharis

Machaerina

Oreobolus

Rhynchospora

Schoenus

Scirpus

Uncinia

(71)

(1)

(134)

111

DIOSCOREACEAE 2

Dioscorea 49

Epipetrum 3

GRAMINEAE 117

Agrostis 31

Aira 3

Alopecurus 5

Ammophila l

Amphibromus l

Andropogon

Anthochloa

Anthoxanthum

Apera

Aristida

Arrhenatherum

Arundo

Avena

Axonopus

Botelua

Bothriochloa

Briza

Bromelica

N 0) == QUo -.. ¿Dh op» 00 mu

—

Bromidium

N

n

Q N — Ot N

Bromus

Calamagrostis

Calotheca

Catabrosa

Cenchrus

Chaetotropis

Chascolytrum

Chloris

Chusquea

Cinna

¡E

N O —= e

D —

Cortaderia

Critesion

Cymbopogon

Cynodon

Cynosurus

Dactylis

a

N D

Danthonia

pu pu

mm NO ia DN) a O) o

Deschampsia

Desmazeria

Deyeuxia Ed

Dichanthelium

Dichelachne

Dielsiochloa

Digitaria

(45)

(560)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Diplachne

Dissanthelium

Distichlis

Echinochloa

Ehrharta

Eleusine

Elymus

Elytrigia

Enneapogon

Eragrostis

Eriochloa

Eustachys

Festuca

Gastridium

Glyceria

Gymnachne

Gynerium

Hainardia

Helictotrichon

Holcus

Hordeum

Imperata

Koeleria

Lachnagrostis

Lagurus

Lamarckia

Leptophyllochloa

Leymus

Lolium

Lophochloa

Megalachne

Melica

Melinis

Microchloa

Microlaena

Munhlenbergia

Munroa

Nassella

Neobouteloua

Oryza

Oryzopsis

Panicum

Parapholis

Paspalum

Pennisetum

Phalaris

Phleum

Phragmites

Piptochaetium

Poa

Podagrostis

Podophorus

Polypogon

Da — N

28

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0 = N Ur -JNO == O Nor in 0 mm om pm += 090 +» == == DNnNnN

Dd

a

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EZ

Puccinellia

Relchela

Rhombolytrum

Rytidosperma

Saccharum

Schismus

Schizagyrium

Scleropogon

Secale

Setaria

Sorghum

Spartina

Sporobolus

Stenotaphrum

Stipa

Trichloris

Trichoneura

Tripogon

Trisetum

Triticum

Vulpia

Zea

HYDROCHARITACEAE

Egeria

Elodea

Limnobium

IRIDACEAE

Calydorea

Chamelum

Herbertia

Libertia

Mastigostyla

Phaiophleps

Sisyrinchium

Solenomelus

Tapeinia

Tigridia

Tritonia

JUNCACEAE

Distichia

Juncus

Luzula

Marsippospermum

Oxychloe

Patosia

Rostkovia

= 0 00m NN-a oO

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15 == HN — Q9 = kJ] —- —- —

N -J

29

pr pus pd O AY

(4)

(29)

(43)

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

JUNCAGINACEAE

Tetroncium

Triglochin

LEMNACEAE

Lemna

Spirodela

Wolffiella

LILAEACEAE

Lilaea

LILIACEAE

Allium

Ancrumia

Astelia

Brodiaea

Camassia

Erinna

Garaventia

Gethyum

Gilliesia

Herreria

Ipheion

Leucocoryne

Miersia

Nothoscordum

Pabellonia

Pasithea

Solaria

Speea

Trichopetalum

Tristagma

Zoellnerallium

ORCHIDACEAE

Aa

Bipinnula

Brachystele

Chloraea

ea

21

—

== 09 NN == mn a N O) nao im pá po po pu pued pad pul pd 0 pd

(4)

(6)

(42)

(47)

Codonorchis

Gavilea

Habenaria

PALMAE

Juania

Jubaea

PHILESIACEAE

Lapageria

Luzuriaga

Philesia

PONTEDERIACEAE

Eichhornia

POTAMOGETONACEAE

Potamogeton

RESTIONACEAE

Leptocarpus

RUPPIACEAE

Ruppia

TECOPHILAEACEAE

Conanthera

Tecophilaea

Zephyra

TYPHACEAE

Typha

ZANNICHELLIACEAE

Zannichellia

ZOSTERACEAE

Heterozostera

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No o

(2)

(5)

(1)

(7)

(1)

(9)

(2)

(1)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

RESUMEN

N? de N* de N* de %

familias géneros especies

PTERIDOPHYTA 27 52 157 3.01

GYMNOSPERMAE 5 10 17 0.33

DICOTYLEDONEAE 132 750 3996 76.62

MONOCOTYLEDONEAE 28 220 1045 20.04

192 1032 5215 100.00

114

Indice

de géneros

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

pu

2

3

4

09 09 $2 09 Ha 09 Ha 09 09 09 09 09 09 -— 09 09 09 09 Ya 09 09 09 09 Q) Ha

Ha 09 $2 09 09 09 09 09 09 ma 09 Ha 09 09 09 ma 09 pa

: Pteridophyta

: Gymnospermae

: Dicotyledoneae

: Monocotyledoneae

ORCHID Aa

COMPOS Abrotanella

MIMOSA Acacia

ROSACE Acaena

CACTAC Acanthocalycium

VERBEN Acantholippia

COMPOS Achillea

COMPOS Achyrocline

COMPOS Adenocaulon

EUPHOR Adenopeltis

PAPILI Adesmia

ADIANT Adiantum

AEXTOX Aextoxicon

SCROPH Agalinis

CRUCIF Agallis

COMPOS Ageratina (ver Eupato-

rium)

COMPOS Ageratum

COMPOS Agoseris '

GRAMIN Agropyron (ver Elymus)

CARYOP Agrostemma

GRAMIN Agrostis

SIMARO Ailanthus

GRAMIN Aira

MIMOSA Albizzia

ROSACE Alchemilla (ver Aphanes y

Lachemilla)

ALISMA Alisma

NYCTAG Allionia

LILIAC Allium

BETULA Alnus

NOLANA Alona

SCROPH Alonsoa

GRAMIN Alopecurus

VERBEN Aloysia

AMARYL Alstroemeria

AMARAN Alternanthera

CRUCIF Alyssum

AMARAN Amaranthus

COMPOS Amblyopappus

COMPOS Ambrosia

UMBELL Ammi

GRAMIN Ammophila

MYRTAC Amomyrtus

GRAMIN Amphibromus

147

09 09 09 09 09 09 09 YY YY N 09 Ha Ha 09 09 09 H2 09 ¡na a 09 09 09 09 09 a» 09 09 09 Ha Ha 09 09 09 09 09

09 09 $2 Hmm 09 Ha m4 09 $2 09 09 09 09 09 pa

BORAGI

PRIMUL

COMPOS

PAPILI

BORAGI

LILIAC

GRAMIN

PRIMUL

RANUNC

UMBELL

GRAMIN

PHYTOL

MALVAC

COMPOS

FRANKE

GRAMIN

UMBELL

GRAMIN

ROSACE

COMPOS

UMBELL

APONOG

CORSIA

VIVIAN

ARAUCA

COMPOS

CARYOP

CACTAC

PAPAVE

BIGNON

EUPHOR

COMPOS

GRAMIN

ARISTO

ELAEOC

SANTAL

PLUMBA

COMPOS

GRAMIN

COMPOS

DAVALL

GRAMIN

ASCLEP

ASPLEN

LILIAC

ASCLEP

COMPOS

Amsinckia

Anagallis

Anaphalis

Anarthrophyllum

Anchusa

Ancrumia

Andropogon

Androsace

Anemone

Anethum

Anisantha (ver Bromus)

Anisomeria

Anoda

Antennaria

Anthemis

Anthobryum

Anthochloa

Anthoxanthum

Anthriscus

Apera

Aphanes

Aphyllocladus

Apium

Aponogeton

Arachnitis

Araeoandra

Araucaria

Arctium

Arctotheca

Arctotis (ver Arctotheca)

Arenaria

Arequipa

Argemone

Argylia -

Argythamnia

Aristeguietia (ver Eupato-

rium)

Aristida

Aristolochia

Aristotelia

Arjona

Armeria

Arnica

Arrhenatherum

Artemisia

Arthropteris

Arundo

Asclepias

Asplenium

Astelia

Astephanus

Aster

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Ha »=— “> $» 09 09 09 $» 09 09 09 09 09 09 == $2 09 09 09 09 09 09 09 09 09 09 UY) 09 Q9 09 Q9 09 09 09 Q9 — Q9 Ha HB 09 09 N 0) $ 09 09 09 09

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GESNER

UMBELL

PAPILI

CHENOP

GRAMIN

CACTAC

CUPRES

CACTAC

EUPHOR

GRAMIN

FLACOU

AZOLLA

UMBELL

COMPOS

SCROPH

COMPOS

LEDOCA

CAESAL

CRUCIF

RANUNC

SCROPH

CHENOP

LAURAC

SCROPH

COMPOS

SOLANA

FLACOU

BERBER

COMPOS

POLYGO

ORCHID

BLECHN

COMPOS

MYRTAC

URTICA

NYCTAG

ONAGRA

UMBELL

AMARYL

CALYCE

LARDIZ

BORAGI

GRAMIN

OPHIOG

LILIAC

GRAMIN

UMBELL

COMPOS

Asteranthera

Asteriscium

Astragalus

Atriplex

Atropis (ver Puccinellia)

Austrocactus

Austrocedrus

Austrocylindropuntia

Avellanita

Avena

Axonopus

Azara

Azolla

Azorella

Baccharis

Bacopa

Bahia

Balbisia

Balsamocarpon

Barbarea

Barneoudia

Bartsia

Bassia

Beilschmiedia

Bellardia

Bellis

Belloa

Benthamiella

Berberidopsis

Berberis

Bidens

Bilderdykia

Bipinnula

Blechnum

Blennosperma

Blepharocalyx

Boehmeria

Boerhavia

Boisduvalia

Bolax

Bomarea

Boopis

Boquila

Borago

Botelua

Bothriochloa

Botrychium

Bottionea (ver Trichope-

talum)

Bouteloua (ver Botelua)

Bowlesia

Brachyandra (ver Helo-

gyne)

118

09 09 $2 09 09 09 He “e a e a 09 09 He 09

Ha 09 09 09

09 09 09 Ha H= 09 09 09 09 Ha 09 2 09 09 09 09 09 09 09 a Q9 Ha 09 09 É$3= 09 09 09 09 09 09 09

COMPOS

ORCHID

CRUCIF

SAPIND

GRAMIN

LILIAC

GRAMIN

MORACE

CACTAC

BUDDLE

CYPERA

ZYGOPH

UMBELL

SOLANA

CAESAL

LOASAC

GRAMIN

PORTUL

SCROPH

CUNONI

COMPOS

MIMOSA

CALLIT

COMPOS

GRAMIN

RANUNC

CALYCE

IRIDAC

CONVOL

LILIAC

ONAGRA

BIGNON

CRUCIF

CARYOP

COMPOS

CYPERA

CARICA

CYPERA

AIZOAC

COMPOS

CAESAL

SCROPH

GRAMIN

COMPOS

GENTIA

COMPOS

Brachyclados

Brachystele

Brassica

Bridgesia

Briza

Brodiaea

Bromelica

Bromidium

Bromus

Broussonetia

Browningia

Buddleja

Bulbostylis

Bulnesia

Bustillosia (ver Asteris-

cium)

Cacabus

Caesalpinia

Caiophora

Calamagrostis (ver tam-

bién Deyeuxia)

Calandrinia

Calceolaria

Caldcluvia

Calendula

Calliandra

Callitriche

Calopappus

Calotheca

Caltha

Calycera (Calicera)

Calydorea

Calystegia

Camassia

Camissonia

Campsidium

Capsella

Cardamine

Cardaria

Cardionema

Carduus

Carex

Carica

Carpha

Carpobrotus

Carthamus

Cassia (ver Senna)

Castilleja

Catabrosa

Cenchrus

Centaurea

Centaurium

Centaurodendron

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

OO + $ 00 09 09 09 «e 09 09 09 09

OD $2 09 09 09 09 09 — Ha 09

09 09 09 09 09 Q9 09 H= 09 09 09 Q9 09 $» 09 09 09 Q9 Ha 09 09 Ha 09 09 09 09 09 Ha pa

UMBELL

COMPOS

PRIMUL

CARYOP

GRAMIN

CERATO

SOLANA

RHAMNA

COMPOS

GRAMIN

IRIDAC

COMPOS

GRAMIN

ADIANT

CHENOP

COMPOS

CYPERA

EUPHOR

ORCHID

GRAMIN

POLYGO

COMPOS

SAXIFR

COMPOS

GRAMIN

GENTIA

COMPOS

GRAMIN

COMPOS

VIVIAN

VITACE

ICACIN

CYPERA

ONAGRA

RANUNC

CAPPAR

LINACE

COMPOS

ORCHID

BORAGI

COMPOS

RHAMNA

EUPHOR

POLEMO

CARYOP

SOLANA

Centella

Centipeda

Centunculus (ver Anagallis)

Cerastium

Ceratochloa (ver Bromus)

Ceratophyllum

Cestrum

Chacaya (ver Discaria)

Chaetanthera

Chaetotropis

Chamelum

Chamomilla (ver también

Matricaria)

Chaptalia

Chascolytrum

Cheilanthes

Chenopodium

Chersodoma

Chevreulia

Chiliophyllum

Chiliotrichum

Chillania (ver Eleocharis)

Chiropetalum (ver Argy-

thamnia)

Chloraea

Chloris

Chorizanthe

Chrysanthemoides

Chrysanthemum

Chrysosplenium

Chuquiraga

Chusquea

Cicendia

Cichorium

Cinna

Cirsium

Cissarobryon

Cissus

Citronella

Cladium (ver Machaerina)

Clarkia

Clematis

Cleome

Cliococca

Cnicus

Codonorchis

Coldenia (ver Tiquilia)

Coleostephus

Colletia

Colliguaja

Collomia

Colobanthus

Combera

NS

OD Q0 Q9 0Q 09.00.0090 0.00) q

Q9 == 09 09 09 09 09 «2 09 09 09 09 09 09 09 09 Q9 «Ha 09

Q09 == 09 $2 Ha 09 HB 09 09 $2 09 09 09 mm

09 09 $2 09 HB on

TECOPH

RHAMNA

UMBELL

CONVOL

COMPOS

CACTAC

RUBIAC

BORAGI

COMPOS

CORIAR

CRUCIF

CARYOP

CACTAC

GRAMIN

MALVAC

COMPOS

CRUCIF

CRASSU

CRUCIF

COMPOS

CONVOL

ELAEOC

MALVAC

GRAMIN

PAPILI

EUPHOR

RUBIAC

BORAGI

LAURAC

ADIANT

COMPOS

ASPIDI

LABIAT

CUSCUT

SCROPH

GRAMIN

ASCLEP

COMPOS

GRAMIN

BORAGI

GRAMIN

CYPERA

CAMPAN

ATHYRI

PAPILI

PODOCA

GRAMIN

PAPILI

GRAMIN

COMPOS

SOLANA

Conanthera

Condalia

Conium

Convolvulus

Conyza

Copiapoa

Coprosma

Cordia

Coreopsis

Coriaria

Coronopus

Corrigiola

Corryocactus

Cortaderia

Corynabutilon

Cotula

Crambe

Crassula

Cremolobus

Crepis

Cressa

Crinodendron

Cristaria

Critesion

Crotalaria

Croton

Cruckshanksia

Cryptantha

Cryptocarya

Cryptogramma

Cryptostemma (ver Arcto-

theca)

Ctenitis

Cuminia

Cuscuta

Cymbalaria

Cymbopogon

Cynanchum

Cynara

Cynodon

Cynoglossum

Cynosurus

Cyperus

Cyphocarpus

Cystopteris

Cytisus (ver también Te-

line)

Dacrydium

Dactylis

Dalea

Danthonia

Dasyphyllum

Datura

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

UMBELL

DAVALL

COMPOS

DENNST

GRAMIN

CRUCIF

DESFON

LORANT

GRAMIN

PAPILI

BROMEL

GRAMIN

Be Pp 09 $32 09 09 09 a == 09 =— 09

GRAMIN

CONVOL

DICKSO

ACANTH

GRAMIN

SCROPH

GRAMIN

MALPIG

DIOSCO

VERBEN

GRAMIN

ATHYRI

ASCLEP

COMPOS

CRUCIF

UMBELL

DIPSAC

RHAMNA

GRAMIN

JUNCAC

GRAMIN

SAPIND

PAPILI

UMBELL

DONATI

COMPOS

BLECHN

CAMPAN

CRUCIF

THYMEL

WINTER

DROSER

CARYOP

ROSACE

SOLANA

EUPHOR

BIGNON

GRAMIN

DA 00 GO U9 LY LO UI LY 09 LY LY mm 09 09 09 09 09 ma Ha Ha 009 09 09 09 09 09 m Ha 00 ma 09 09 ma 09 ma 00 00 Ha ma

Daucus

Davallia

Dendroseris

Dennstaedtia

Deschampsia

Descurainia

Desfontainia

Desmaria

Desmazeria

Desmodium

Deuterocohnia

Deyeuxia (ver también Ca-

lamagrostis)

Dichanthelium

Dichelachne

Dichondra

Dicksonia

Dicliptera

Dielsiochloa

Digitalis

Digitaria

Dinemagonum

Dinemandra

Dioscorea

Diostea

Diplachne

Diplazium

Diplolepis

Diplostephium

Diplotaxis

Diposis

Dipsacus

Discaria

Dissanthelium

Distichia

Distichlis

Dodonaea

Dolichos

Domeykoa

Donatia

Doniophyton

Doodia

Downingia

Draba

Drapetes

Drimys

Drosera

Drymaria

Duchesnea

Dunalia

Dysopsis

Eccremocarpus

Echinochloa

120

Lo L0 LY LO LY HA 09 09 LD 09 09 09 09 LY LY LI 09 09 09 L9 Ha Ha 09 09 09 09 09 09 9 09 09 Ham ma 09 ND Ha 00 09 09 00 me a qe e A OO | e e A 09 09

BORAGI

COMPOS

HYDROC

GRAMIN

PONTED

LOMARI

ELATIN

CYPERA

GRAMIN

HYDROC

GRAMIN

APOCYN

PROTEA

EMPETR

COMPOS

GRAMIN

EPHEDR

ONAGRA

DIOSCO

EQUISE

GRAMIN

PHYTOL

CACTAC

COMPOS

EUPHOR

UMBELL

CRUCIF

LORANT

COMPOS

LILIAC

GRAMIN

CACTAC

GERANI

CRUCIF

PAPILI

CRUCIF

UMBELL

SAXIFR

PAPAVE

EUCRYP

CRUCIF

CACTAC

COMPOS

EUPHOR

SCROPH

GRAMIN

CONVOL

SOLANA

COMPOS

RUTACE

Echium

Eclipta

Egeria

Ehrharta

Eichhornia

Elaphoglossum

Elatine

Eleocharis

Eleusine

Elodea

Elymus

Elytrigia

Elytropus

Embothrium

Empetrum

Encelia

Enneapogon

Ephedra

Epilobium

Epipetrum

Equisetum

Eragrostis

Ercilla

Erdisia

Erechtites

Eremocarpus

Eremocharis

Eremodraba '

Eremolepis

Eriachaenium

Erigeron

Erinna

Eriochloa

Eriosyce

Erodium

Erophila

Errazurizia

Eruca

Eryngium

Escallonia

Eschscholzia

Eucryphia

Eudema

Eulychnia

Eupatorium

Euphorbia

Euphrasia

Eustachys

Evolvulus

Exodeconus (ver Cacabus)

Fabiana

Facelis

Fagara

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Ha 09 09 mu 09 09 09 09 UY 09 Q9 Ha 09 == 09 09 HA 09 09 09 H2 09 Q9 09 09 Q9 09 Ha 09 He Ha 09 09 09 09 09 HA 09 09 09 09 09 Ha 09 09 09 00 N 09 Ha e Ha 09

ZYGOPH

AMARYL

BROMEL

GRAMIN

COMPOS

CUPRES

COMPOS

UMBELL

SCROPH

LILIAC

ROSACE

SAXIFR

FRANKE

ONAGRA

FUMARI

CENTRO

PAPILI

COMPOS

RUBIAC

CALYCE

COMPOS

LILIAC

GRAMIN

ERICAC

ORCHID

ONAGRA

GENTIA

PAPILI

GERANI

SCROPH

LILIAC

ROSACE

PROTEA

POLEMO

LILIAC

VERBEN

LABIAT

GLEICH

AIZOAC

GRAMIN

PAPILI

COMPOS

GOMORT

AMARAN

MALVAC

SOLANA

GRAMMI

CRUCIF

SCROPH

BROMEL

Fagonia

Famatina

Fascicularia

Festuca

Filago

Fitzroya

Flaveria

Flourensia

Foeniculum

Fonkia

Fortunatia (ver Camassia)

Fragaria

Francoa

Frankenia

Fuchsia

Fumaria

Gaimardia

Galega

Galinsoga

Galium

Gamocarpha

Gamochaeta

Garaventia

Gastridium

Gaultheria

Gavilea

Gayophytum

Gentiana

Gentianella

Geoffroea

Geranium

Gerardia (ver Agalinis)

Gethyum

Geum

Gevuina

Gilia

Gilliesia

Glandularia

Glechoma

Gleichenia

Glinus

Glyceria

Glycyrrhiza

Gnaphalium

Gochnatia

Gomortega

Gomphrena

Gossypium

Grabowskia

Grammitis

Grammosperma

Gratiola

Greigia

121

09 09 $2 Q9 09 09 Q9 Q9 09 09 09 09 09 $ ¿a 09 09 $2 09 2 09 09 09 09 09

O9 Q9 09 $2 09 09 $2 09

us

Ha 09 09 09 $ 09 == 09 Ha 09

COMPOS

CORNAC

SAPIND

GUNNER

COMPOS

GRAMIN

UMBELL

GRAMIN

COMPOS

CACTAC

ORCHID

GRAMIN

HALORA

RANUNC

COMPOS

ANACAR

SCROPH

RUBIAC

COMPOS

CACTAC

COMPOS

GRAMIN

BORAGI

COMPOS

IRIDAC

CARYOP

SCROPH

LILIAC

CRUCIF

COMPOS

CRUCIF

ZOSTER

COMPOS

GRAMIN

COMPOS

AMARYL

HIPPUR

DENNST

CAESAL

GRAMIN

CRUCIF

UMBELL

CARYOP

GRAMIN

Grindelia

Griselinia

Guindilia

Gunnera

Gutierrezia

Gymnachne

Gymnophyton

Gynerium

Gypothamnium

Haageocereus

Habenaria

Hainardia

Haloragis

Hamadryas

Haplopappus

Haplorhus

Hebe

Hedyotis

Hedypnois

Helenium

Helianthocereus

Helianthus

Helictotrichon

Heliotropium

Helminthotheca (ver Pi-

cris)

Helogyne

Herbertia

Herniaria

Herpestis (ver Bacopa)

Herreria

Hesperis

Hesperoseris (ver Dendro-

seris)

Heterosperma

Heterothrix (ver Steno-

draba)

Heterozostera

Hieracium

Hierochloe (ver Antho-

xanthum)

Hinterubera

Hippeastrum

Hippuris

Histiopteris

Hoffmanseggia

Holcus

Hollermayera

Homalocarpus

Honkenya

Hordeum (ver también

Critesion)

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

3

Ha» 09 09 09 HH 09 09

a ea a a O

CACTAC

PAPILI

UMBELL

LYCOPO

VIOLAC

HYDRAN

UMBELL

HYDROC

HYMENO

CRUCIF

HYMENO

HYPERI

COMPOS

DENNST

CAMPAN

COMPOS

GRAMIN

PAPILI

LILIAC

CONVOL

POLEMO

CRUCIF

ISOETA

CRUCIF

SOLANA

SCROPH

PALMAE

JUNCAC

VERBEN

ROSACE

SCROPH

GRAMIN

POLYGO

KRAMER

LABIAT

ROSACE

GRAMIN

LACTOR

COMPOS

GRAMIN

LABIAT

VERBEN

PHILES

COMPOS

LARDIZ

UMBELL

ZYGOPH

POLYGO

COMPOS

Horridocactus (ver Neo-

porteria)

Hosackia (ver Lotus)

Huanaca

Huperzia

Hybanthus

Hydrangea

Hydrocotyle

Hydromystria (ver Limno-

bium)

Hymenoglossum

Hymenolobus

Hymenophyllum

Hypericum

Hypochaeris

Hypolepis

Hypsela

Hysterionica

Imperata

Indigofera

Ipheion

Ipomoea

Ipomopsis

Isatis

Isoetes

Ivania

Jaborosa

Jovellana

Juania

Jubaea

Juncus

Junellia

Kageneckia

Kickxia

Koeleria

Koenigia

Krameria

Kurzamra

Lachemilla

Lachnagrostis

Lactoris

Lactuca

Lagenifera

Lagurus

Lamarckia

Lamium

Lampaya

Lapageria

Lapsana

Lardizabala

Laretia

Larrea

Lastarriaea

Lasthenia

122

hh Ha 09 09 09 09 09 09 H» 09 Ha 09 09 09 Q9 09 09 09 09

e E A RS

PAPILI

SOLANA

MONIMI

MALVAC

EPACRI

CAMPAN

MYRTAC

LEMNAC

PORTUL

AMARYL

COMPOS

LABIAT

CRUCIF

LORANT

COMPOS

RESTIO

GRAMIN

RUBIAC

SAXIFR

COMPOS

LILIAC

COMPOS

GRAMIN

IRIDAC

LORANT

LILAEA

UMBELL

HYDROC

LUMBA

SCROPH

POLEMO

SCROPH

LINACE

VERBEN

ANACAR

PLANTA

SAPIND

LOASAC

CAMPAN

CRUCIF

GRAMIN

PROTEA

GRAMIN

COMPOS

LOPHOS

PAPILI

COMPOS

Lathyrus

Latua

Laurelia

Laureliopsis (ver Laurelia)

Lavatera

Lebetanthus

Legenere

Legrandia

Lemna

Lenzia

Leontochir

Leontodon

Lepechinia (ver Sphacele)

Lepidium

Lepidoceras

Lepidophyllum

Leptocarpha

Leptocarpus

Leptochloa (ver Diplach-

ne)

Leptophyllochloa

Leptostigma

Lepuropetalon

Leucanthemum

Leucheria

Leucocoryne

Leunisia

Leymus

Libertia

Ligaria

Lilaea

Lilaeopsis

Limnobium

Limonium

Limosella

Linanthus

Linaria

Lindernia

Linum

Lippia

Lithraea (ver Lithrea)

Lithrea

Littorella

Llagunoa

Loasa

Lobelia

Lobularia

Lolium

Lomatia

Lophochloa

Lophopappus

Lophosoria

Lotus

Lucilia

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

09 09 09 09 09 09 09 09 0) 09 09 Ha 09 09 = 09 09 09 09 Q9 ma Ha 09 09 09 09 09

09 09 Ha» 09 Ha == 09 09

09 09 Q9 09 09 09 09 09 09 He» 09 He Ha 09 09

COMPOS

SAPOTA

ONAGRA

MYRTAC

PAPILI

JUNCAC

PHILES

COMPOS

CARYOP

SOLANA

LYCOPO

PRIMUL

LYTHRA

CYPERA

COMPOS

CACTAC

MALVAC

COMPOS

MALESH

MALVAC

CRUCIF

ROSACE

LABIAT

MARSIL

JUNCAC

COMPOS

IRIDAC

CRUCIF

COMPOS

CELAST

PAPILI

GRAMIN

PAPILI

GRAMIN

LABIAT

SCROPH

OLEACE

CRUCIF

LABIAT

LOASAC

AIZOAC

ZYGOPH

GENTIA

Luciliopsis

Lucuma (ver Pouteria)

Ludwigia

Luma

Lupinus

Luzula

Luzuriaga

Lycapsus

Lychnis

Lycianthes (ver Solanum)

Lycium

Lycopersicon

Lycopodium

Lysimachia

Lythrum

Machaerina

Macrachaenium

Madia

Maihuenia

Malacothamnus

Malacothrix

Malesherbia

Malva

Malvastrum

Malvella

Mancoa

Margyracaena (x Margy-

racaena)

Margyricarpus

Marrubium

Marsilea

Marsippospermum

Marticorenia

Mastigostyla

Mathewsia

Matricaria (ver también

Chamomilla)

Maytenus

Medicago

Megalachne

Melica

Melilotus

Melinis

Melissa

Melosperma

Menodora

Menonvillea

Mentha

Mentzelia

Mesembryanthemum

Metharme

Microcala (ver Cicendia)

123

Q9 H= 09 09 09 Ha2 09 09 09 09 09 09 09 09 09 09 09 09 09 Ha 09 Ha 09 09 09 0909 Ha 09 09 Ha 09 09 09 09 09 09 09 Ha 09 09 09 09 -=< ma pa

09

CRUCIF

GRAMIN

DENNST

CARYOP

COMPOS

POLEMO

LILIAC

COMPOS

SCROPH

CARYOP

MISODE

GESNER

COMPOS

MALVAC

GRAMIN

POLYGA

PORTUL

GRAMIN

PORTUL

SCROPH

COMPOS

CALYCE

POLYGO

GRAMIN

UMBELL

GRAMIN

COMPOS

SANTAL

BORAGI

RANUNC

MYRTAC

MYRICA

HALORA

MYRTAC

HYDROP

SANTAL

COMPOS

GRAMIN

CALYCE

CRUCIF

POLEMO

GRAMIN

CACTAC

RUBIAC

Microcardamum (ver Hy-

menolobus)

Microchloa

Microlaena

Microlepia

Microphyes

Micropsis

Microseris

Microsteris

Miersia

Mikania

Mimulus

Minuartia

Misodendrum

Mitraria

Mniodes

Modiola

Monerma (ver Hainardia)

Monnina

Monocosmia

Monroa (ver Munroa)

Montia

Monttea

Moscharia

Moschopsis

Muehlenbeckia

Munhlenbergia

Mulinum

Munroa

Muusia

Myoschilos

Myosotis

Myosurus

Myrceugenella (ver Luma)

Myrceugenia

Myrica

Myriophyllum

Myrteola

Nama

Nanodea

Nardophyllum

Nassauvia

Nassella

Nastanthus

Nasturtuum

Navarretia

Neobouteloua

Neochilenia (ver Neopor-

teria)

Neoporteria

Neowerdermannia

Nertera

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

00 HH 09 09 09 09 09 09 09 9 U) Uy

Q0 09 HB 09 09 Q9 ma

Q0 09 45H 09 $3 09 09 09 09 09 09 09 «2 09 09 —= 09 Q9 Ha 09

00 09 H$>= 09 09 $2 09 09 09 09

BORAGI

CRUCIF

SOLANA

UMBELL

CHENOP

NOLANA

LORANT

FAGACE

ADIANT

MYRTAC

LILIAC

COMPOS

MALVAC

NYMPHA

BROMEL

ONAGRA

RUBIAC

BALANO

IRIDAC

COMPOS

CRUCIF

OPHIOG

COMPOS

CACTAC

CYPERA

CACTAC

UMBELL

RUBIAC

PROTEA

COMPOS

PAPILI

OROBAN

GRAMIN

SCROPH

GRAMIN

UMBELL

COMPOS

SCROPH

THYMEL

OXALID

NYCTAG

JUNCAC

COMPOS

POLYGO

ETLLAG

COMPOS

MALVAC

Nesocaryum

Neuontobothrys

Nicandra

Nicotiana

Nierembergia

Niphogeton

Nitrophila

Nolana

Notanthera

Nothofagus

Notholaena

Nothomyrcia (ver Myrceu-

genia)

Nothoscordum

Noticastrum

Nototriche

Nymphaea

Ochagavia

Oenothera

Oldenlandia (ver Hed-

yotis)

Ombrophytum

Ona (ver Tapeinia)

Onopordum

Onuris

Ophioglossum

Ophryosporus

Opuntia

Oreobolus

Oreocereus

Oreomyrrhis

Oreopolus

Orites

Oritrophium (ver Aster)

Ornithopus

Orobanche

Ortachne (ver Stipa)

Orthocarpus

Oryza

Oryzopsis

Osmorhiza

Osteospermum (ver Chry-

santhemoides)

Ourisia

Ovidia

Oxalis

Oxybaphus

Oxychloe

Oxyphyllum

Oxytheca

Pabellonia

Pachylaena

Palaua

124

09 52 09 $2 09 09 09 Ha Ha Ha 09 09 09 09 09 09 09 09 09 Q9 Ha» 09 09 =— Q9 Ha Q9 09 Ha Éh09.09.09.09.09s'+53snA

O

09 09 09 09 Q9 ==

GRAMIN

COMPOS

SCROPH

URTICA

CARYOP

COMPOS

LILIAC

GRAMIN

PASSIF

UMBELL

JUNCAC

BORAGI

ADIANT

PRIMUL

CRUCIF

GRAMIN

PIPERA

LYTHRA

COMPOS

ERICAC

LAURAC

CARYOP

SOLANA

MONIMI

HYDROP

IRIDAC

GRAMIN

PHILES

ASCLEP

PORTUL

CARYOP

GRAMIN

CRUCIF

GRAMIN

COMPOS

GRAMIN

SOLANA

AMARYL

VERBEN

STYLID

POLYPO

SOLANA

REY TOE

COMPOS

URTICA

Panicum

Parapholis

Parastrephia

Parentucellia

Parietaria

Paronychia

Parthenium

Pasithea

Paspalum

Passiflora

Pastinaca

Patosia

Pectocarya

Pellaea

Pelletiera

Pennellia (ver Stenodraba)

Pennisetum

Peperomia

Peplis

Perezia

Perityle

Pernettya

Persea

Petrorhagia

Petunia

Peumus

Phacelia

Phaiophleps

Phalaris

Philesia

Philibertia

Philippiamra

Philippiella

Phippsia (ver Catabrosa)

Phlebiophragmus

Phleum

Phoenicoseris (ver Den-

droseris)

Phragmites

Phrodus

Phycella (ver Hippeas-

trum)

Phyla

Phyllachne

Phymatodes (ver Phymato-

sorus)

- Phymatosorus

Physalis

Phytolacca

Picris

Picrosia

Pilea

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

<= 00 09 $2 09 $2 Mn) 09 09 — 09 n

09 09 09 09 N 09 09 09 09 09 09 09 $2 09 09 == pa == 09 09 09 09 09 09 Ha NN) 09 He Ha 09 09 =— 09 == Q9 09 09 09 09 pa

CUPRES

RAFFLE

MARSIL

LENTIB

ZYGOPH

PINACE

GRAMIN

COMPOS

ARACEA

RUTACE

VERBEN

ADIANT

AMARYL

BORAGI

PLANTA

COMPOS

VALERI

COMPOS

POLYPO

LYTHRA

ASPLEN

COMPOS

PLUMBA

GRAMIN

COMPOS

PODOCA

GRAMIN

POLEMO

COMPOS

CARYOP

POLYGA

POLYGO

ROSACE

POLYPO

GRAMIN

ASPIDI

ZYGOPH

PORTUL

POTAMO

ROSACE

SAPOTA

UMBELL

CAMPAN

PRIMUL

MIMOSA

COMPOS

PODOCA

LABIAT

ARALIA

COMPOS

Pilgerodendron

Pilostyles

Pilularia

Pinguicula

Pintoa

Pinus

Piptochaetium

Piqueria

Pistia

Pitavia

Pitraea

Pityrogramma (ver Tris-

meria)

Placea

Plagiobothrys

Plantago

Plazia

- Plectritis

Pleocarphus

Pleopeltis

Pleurophora

Pleurosorus

Pluchea

Plumbago

Poa

Podagrostis

Podanthus

Podocarpus

Podophorus

Polemonium

Polyachyrus

Polycarpon

Polygala

Polygonum

Polylepis

Polypodium

Polypogon

Polystichum

Porlieria

Portulaca

Potamogeton

Potentilla

Pouteria

Pozoa

Pratia

Primula

Prosopis

Proustia

Prumnopitys

Prunella

Pseudopanax

Psila (ver Baccharis)

Psilocarphus

125

Q0 HB 09 $52 Ha 09 Ha == 09 09 09 Ha 09 09 09 09 09 $2 09 Ha Ha 09 09 09 09 09 09 $2 09 09 09 09 09 09 09 09 09 0

== 09 09 09 09 09

PSILOT

PAPILI

ADIANT

GRAMIN

BROMEL

CARYOP

CACTAC

ROSACE

SANTAL

RANUNC

CRUCIF

COMPOS

MYRTAC

CARYOP

CACTAC

RUBIAC

GRAMIN

RESEDA

RHAMNA

SOLANA

RHAMNA

VERBEN

COMPOS

AMARYL

GRAMIN

PAPILI

CYPERA

SAXIFR

EUPHOR

COMPOS

CRUCIF

ROSACE

JUNCAC

RUBIAC

ROSACE

POLYGO

ASPIDI

RUPPIA

RUTACE

GRAMIN

CARYOP

ALISMA

CHENOP

SALICA

SOLANA

CHENOP

LABIAT

SALVIN

Psilotum

Psoralea

Pteris

Puccinellia

Puya

Pycnophyllum

Pyrrhocactus (ver Neopor-

teria)

Quillaja

Quinchamalium

Ranunculus

Raphanus

Rapistrum

Rea (ver Dendroseris)

Reichea

Reicheella

Reicheocactus

Relbunium

Relchela

Reseda

Retanilla

Reyesia

Rhamnus

Rhaphithamnus

Rhetinodendron

Rhodophiala

Rhombolytrum

Rhynchosia

Rhynchospora

Ribes

Ricinus

Robinsonia

Rorippa

Rosa

Rostkovia

Rubia

Rubus

Rumex

Rumohra

Ruppia

Ruta

Rytidosperma

Saccharum

Sagina

Sagittaria

Salicornia (ver Sarco-

cornia)

Salix

Salpichroa

Salpiglossis

Salsola

Salvia

Salvinia

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

L9 9 L9 09 LD 00 09 UY Hx 09 = 09 Y 09 09 = 09 Hmm 09 09 09 09 Ha Ha 09 Ha Ham 09 09 09 09 Ha mu Ham 09 09 09 09 09 09 MN 09 09 09 09 09 09 09 09 YY 09 YY UY

CAPRIF

PRIMUL

CARYOP

ROSACE

UMBELL

SANTAL

SAPIND

CARYOP

CHENOP

GESNER

PAPILI

LABIAT

PODOCA

SAXIFR

DIPSAC

UMBELL

ANACAR

GRAMIN

SCHIZA

GRAMIN

SOLANA

UMBELL

CRUCIF

COMPOS

CYPERA

CARYOP

GRAMIN

COMPOS

SCROPH

LABIAT

LOASAC

GRAMIN

CRASSU

SELAGI

BORAGI

GOODEN

COMPOS

CAESAL

HYMENO

UMBELL

GRAMIN

RUBIAC

CUCURB

MALVAC

COMPOS

CARYOP

PORTUL

COMPOS

CRUCIF

Sambucus

Samolus

Sanctambrosia

Sanguisorba

Sanicula

Santalum

Sapindus

Saponaria

Sarcocornia

Sarmienta

Sarothamnus (ver Cytisus)

Satureja

Saxe-gothaea

Saxifraga

Saxifragella

Saxifragodes

Scabiosa

Scandix

Schinus

Schismus

Schizaea

Schizagyrium

Schizanthus

Schizeilema (ver Huanaca)

Schizopetalon

Schkuhria

Schoenus

Scirpus

Scleranthus

Scleropoa (ver Desmazeria)

Scleropogon

Scolymus

Scrophularia

Scutellaria

Scyphanthus

Secale

Sedum

Selaginella

Selkirkia

Selliera

Senecio

Senna

Serpyllopsis

Seseli

Setaria

Sherardia

Sicyos

Sida

Sigesbeckia

Silene

Silvaea (ver Philippiamra)

Silybum

Sisymbrium

09 $w 09 HB 09 09 09 09 09 09 Ha H= 09 09 09 09 09 $» 09 Ha Hu 09 09 09 09 $» 09 Ha 09 09 09 09 ma

Q9 09

09 09 09 09 09 09 09 09 $= 09 09 09 Ha 09 09 09

IRIDAC

APOCYN

UMBELL

CACTAC

SOLANA

LILIAC

URTICA

IRIDAC

COMPOS

PAPILI

GRAMIN

PAPILI

LILIAC

CARYOP

LABIAT

MALVAC

COMPOS

LEMNAC

GRAMIN

LABIAT

VALERI

CARYOP

SCROPH

ACANTH

CRUCIF

GRAMIN

COMPOS

GRAMIN

COMPOS

CHENOP

COMPOS

RHAMNA

COMPOS

IRIDAC

MALVAC

COMPOS

BIGNON

TECOPH

PAPILI

MYRTAC

CACTAC

MYRTAC

COMPOS

SAXIFR

TETRAC

ROSACE

Sisyrinchium

Skytanthus

Smyrnium

Soehrensia

Solanum

Solaria

Soleirolia

Solenomelus

Solidago

Soliva

Sonchus

Sophora

Sorghum

Spartina

Spartium

Speea

Spergula

Spergularia

Sphacele

Sphaeralcea

Spilanthes

Spirodela

Sporobolus

Stachys

Stangea

Stellaria

Stemodia

Stenandrium

Stenodraba

Stenotaphrum

Stevia

Stipa

Strongyloma (ver Nas-

sauvia)

Suaeda

Symphyochaeta (ver Ro-

binsonia)

Tagetes

Talguenea

Tanacetum

Tapeinia

Tarasa

Taraxacum

Tecoma

Tecophilaea

Teline

Temu (ver Blepharocalyx)

Tephrocactus

Tepualia

Tessaria

Tetilla

Tetrachondra

Tetraglochin

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

HB 09 $2 00 090 Ha 09 pa Ma H=— 09 09 Ham 09 09 09 09 Ha 09 09 09 He Ha — 00 090 == 00 09 de 09

Q9 09 Ha» 0S 09 09 09 09 Ha Ha 09 Ha nm ma

AIZOAC

JUNCAG

LABIAT

COMPOS

THELYP

MALVAC

CRUCIF

THYRSO

IRIDAC

BROMEL

BORAGI

UMBELL

COMPOS

AMARYL

SOLANA

RHAMNA

SAXIFR

ZYGOPH

GRAMIN

CACTAC

COMPOS

HYMENO

GRAMIN

LILIAC

PAPILI

JUNCAG

PAPILI

CAMPAN

GRAMIN

COMPOS

GRAMIN

ADIANT

LILIAC

LORANT

GRAMIN

IRIDAC

TILIAC

COMPOS

TROPAE

COMPOS

ASCLEP

TYPHAC

MYRTAC

PAPILI

Tetragonia

Tetroncium

Teucrium

Thamnoseris

Thelypteris

Thespesia

Thlaspi

Thyrsopteris

Tigridia

Tillandsia

Tiquilia

Torilis

Tragopogon

Traubia

Trechonaetes

Trevoa

Tribeles

Tribulus

Trichloris

Trichocereus

Trichocline

Trichomanes

Trichoneura

Trichopetalum

Trifolium

Triglochin

Trigonella

Triodanis

Tripogon

Triptilion

Trisetobromus (ver

Bromus)

Trisetum

Trismeria

Tristagma

Tristerix

Triucum

Tritonia

Triumfetta

Trixis

Tropaeolum

Troximon (ver Agoseris)

Tweedia

Typha

Ugni

Ulex

09 00

090 $ Ha a a 09 mm 09 09 == H»= 09 09 09 09 09 09 Q9 09 $» 09 == 09 09 09 09 09 Q9 Q9 Q9 Q9 Q9 Q9 9 LY 09 09 Q9 09 09 Q9 Y

CYPERA

VERBEN

CRUCIF

COMPOS

MALVAC

COMPOS

URTICA

LENTIB

SAXIFR

SAPIND

VALERI

COMPOS

SCROPH

VERBEN

COMPOS

SCROPH

SOLANA

PAPILI

COMPOS

APOCYN

VIOLAC

VITTAR

VIVIAN

GRAMIN

CAMPAN

STERCU

CRUCIF

COMPOS

CUNONI

LEDOCA

CRUCIF

COMPOS

LEMNAC

ATHYRI

COMPOS

CRUCIF

GRAMMI

COMPOS

ZANNIC

GRAMIN

TECOPH

LILIAC

CAESAL

Uncinia

Urbania

Urbanodoxa (ver Cremo-

lobus)

Urmenetea

Urocarpidium

Urospermum

Urtica

Utricularia

Valdivia

Valenzuelia (ver Guindilia)

Valeriana

Valerianella

Vasquezia (ver Villanova)

Verbascum

Verbena

Verbesina

Veronica

Vestia

Vicia

Viguiera

Villanova

Vinca

Viola

Vittaria

Viviania

Vulpia

Wahlenbergia

Waltheria

Weberbauera

Wedelia

Weinmannia

Wendtia

Werdermannia

Werneria

Wolffiella

Woodsia

Xanthium

Xerodraba

Xiphopteris

Yunquea

Zannichellia

Zea

Zephyra

Zoellnerallium

Zuccagnia

Indice

de autores y abreviaturas

129

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Abbiatti

Acev.

Acev. et Kaus.

Acev. et Navas

Aellen

Agardh

Ahrendt

Aiton

Aiton, W.

Alboff

All.

Alston

Anderss.

Andr.

André

Ard.

Arech.

Arn.

Aschers.

Aschers. et Graebn.

Aschers. et Schweinf.

Aspl.

Aubl.

B. et H.

B-S.P.

Bacig.

Back.

Back. et Doelz

Baehni et Macbr.

Bailey

Baillon

Baker

Baker, E.

Balb.

Ball

Ball, P.W. et Heyw.

Banks

Banks et Soland.

Barkley

Barlow et Wiens

Barn.

Barneby

Barros

Bartal.

Bartl.

Bates

Batt. et Trab.

Delia Abbiatti (1918-x)

Rebeca Acevedo (1903-x)

Rebeca Acevedo y Eberhard Max Leopold Kausel

Rebeca Acevedo y Luisa Eugenia Navas

Paul Aellen (1896-1973)

Jacob Georg Agardh (1813-1901)

Leslie Walter Allam Ahrendt (1903-x)

William Aiton (1731-1793)

William Townsend Aiton (1766-1849)

Nicolai Michailovitch Alboff (1866-1899)

Carlo Allioni (1728-1804)

Arthur Hugh Garfit Alston (1902-1958)

Nils Johan Andersson (1821-1880)

Henry C. Andrews (1794-1830?)

Edouard Francois André (1840-1911)

Pietro Arduino (1728-1805)

José Arechavaleta y Balpardo (1838-1912)

George Arnold Walker Arnott (1799-1868)

Paul Friedrich August Ascherson (1834-1913)

Paul Friedrich August Ascherson y Karl Otto Robert Peter Paul Graebner

Paul F.A. Ascherson y Georg Schweinfurt (1836-1925)

Erik Asplund (1888-1974)

Jean Baptiste Christophe Fusee Aublet (1720-1778)

George Bentham y Joseph Dalton Hooker

N.L. Britton, Emerson Ellick Sterns (1846-1926) y Justus Ferdinand Poggen-

burg (1840-1926)

Nélida María Bacigalupo (1924-x)

Curt Backeberg (1896-1966)

Curt Backeberg y V.B. Doelz

Charles Baehni (1906-1964) y James Francis Macbride

Liberty Hyde Bailey (1858-1954)

Henri Ernest Baillon (1827-1895)

John Gilbert Baker (1834-1920)

Edmund Gilbert Baker (1864-1949)

Giovanni-Batista Balbis (1765-1831)

John Ball (1818-1889)

P.W. Ball (1932-x) y Vernon Hilton Heywood

Joseph Banks (1743-1820)

Joseph Banks y Daniel Carl Solander

Fred Alexander Barkley (1908-x)

B.A. Barlow (Contemp.) y Delberto Wiens (1932-x)

Francois Marius Barneoud (1821-27)

Rupert Charles Barneby (1911-x)

Manuel Barros (1880-1978)

Biagio Bartalani (1764-1822)

Friedrich Gottlieb Bartling (1798-1875)

David M. Bates (Contemp.)

Jules Aimé Battandier (1848-1922) y Louis Trabut (1853-1929)

131

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Baudo

Baumg.

Bayer et Grau

Bean

Beauv., P.

Beauverd

Beck

Becker

Beetle

Benn., A.

Benn., J.

Benth.

Berg

Berger

Bernh.

Bert.

Bertol.

Besser

Betcke

Bieb.

Bierner

Bitter

Bjoerk.

Blake

Blasdell

Blom

Blume

Blytt

Boca.

Boeck.

Boelcke

Boenn.

Bogin

Boiss.

Boiv.

Boland.

Bolle

Bonpl.

“Boott

Borbás

Boreau

Borg

Bors.

Bory

Bory et Chauv.

Bosch, V. den

Botta

Br., N.E.

Br., R.

Br. et Clark

Brand

Braun

F. Baudo (fl. 1843)

Johann Christian Gottlob Baumgarten (1765-1843)

Ehrentraud Bayer (Contemp.) y Juerke Grau

William Jackson Bean (1863-1947)

Ambroise Marie Francois Joseph Palisot de Beauvois (1752-1820)

Gustave Beauverd (1867-1942)

Guenther Beck, Ritter von Mannagetta und Lerchenau (1856-1931)

Wilhelm Becker (1874-1928)

Alan Ackerman Beetle (1913-x)

Alfred William Bennett (1833-1932)

John Joseph Bennett (1801-1876)

George Bentham (1800-1884)

Otto Karl Berg (1815-1866)

Alwin Berger (1871-1931)

Johann Jakob Bernhardi (1774-1850)

Carlo Giuseppe Bertero (1789-1831)

Antonio Bertoloni (1775-1869)

Wilibald Swibert Joseph Gottlieb von Besser (1784-1842)

Ernst Friedrich Betcke (1815-1865)

Friedrich August Marshall von Bieberstein (1768-1826)

Mark W. Bierner (Contemp.)

Friedrich August Georg Bitter (1873-1927)

Sven Oscar Bjoerkman (1920-1956)

Sidney Fay Blake (1892-1959)

Robert F. Blasdell (fl. 1963)

Carl Blom (1888-1972)

Carl Ludwig Blume (1796-1826)

Mattias Numsen Blytt (1789-1862)

Gilbert Bocquet (1927-x)

Johann Otto Boeckeler (1803-1899)

Osvaldo Boelcke (Contemp.)

Clemens María Friedrich von Boenninghausen (1785-1864)

Clifford Bogin (1920-x)

Pierre Edmond Boissier (1810-1885)

Joseph Robert Bernard Boivin (1916-x)

Henry Nicholas Bolander (1832-1897)

Friedrich Bolle (1905-x)

Aimé Jacques Alexandre Bonpland (1773-1858)

Francis M.B. Boott (1792-1863)

Vincze von Borbás (1844-1905)

Alexandr Boreau (1801-1875)

John Borg (1873-1945)

Olga Elena Borsini (1916-1981)

Jean Baptiste Genevieve Marcellin Bory de Saint-Vincent (1778-1846)

J.B.G.M. Bory de Saint-Vincent y Louis Anastase Chauvard (1785-1865)

Roelof Benjamin van den Bosch (1810-1862)

Silvia Margarita Botta (Contemp.)

Nicolas Edward Brown (1849-1934)

Robert Brown (1773-1858)

Gregory K. Brown (Contemp.) y W. Dennis Clark (Contemp.)

August Brand (1863-1930)

Alexander Carl Heinrich Braun (1805-1877)

132

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Braun et Bouché

Bridges

Briq.

Britton

Britton et Rose

Brongn.

Brot.

Brucher

Buch.

Buck

Buek

Burk.

Burm. f.

Burret

Burtt

Burtt et A.W. Hill

Burtt et Sleumer

Buxb.

Cabr.:

Cabr. et Zard.

Cald.

Cambess.

Campa.

Caro

Caro et Sánchez

Caruel

Cass.

"Cav.

Cav. et Domb.

Cels

Chaix

Cham.

Cham. et Schlecht.

Chamb.

Chater

Chaudhri

Chev.

Ching

Chodat

Chodat et Wilcz.

Choisy

lr:, C.

Chr., C. et Skottsb.

Christ

Clairv.

Clarke, C.B.

Clausen

Clos

Coc.

Colla

Comes

Comm.

Conert

Alexander Carl Heinrich Braun y Carl David Bouché (1809-1881)

Thomas Bridges (1807-1865)

John Isaac Briquet (1870-1931)

Nathaniel Lord Britton (1859-1934)

Nathaniel Lord Britton y Joseph Nelson Rose (1862-1928)

Adolphe Theodore Brongniart (1801-1876)

Félix de Avella Brotero (1744-1828)

Heinz Brucher (1918-x)

Franz Georg Philipp Buchenau (1831-1906)

Hilda T. Buck (Contemp.)

Heinrich Wilhelm Buek (1796-1879)

Arturo Erhardo Burkart (1906-1975)

Nicolaas Laurens Burman (1773-1793)

Karl Ewald Maximilian Burret (1883-1964)

Brian Lawrence Burtt (1913-x)

Brian Lawrence Burtt y Arthur William Hill

Brian Lawrence Burtt y Hermann Otto Sleumer

Franz Buxbaum (1900-1979)

Angel Lulio Cabrera (1908-x)

Angel L. Cabrera y Elsa M. Zardini

Cleofé E. Calderón (1931-x)

Jacques Cambessedes (1799-1863)

Francisco Campderá (1793-1862)

José A. Caro (Contemp.)

José A. Caro y Evangelina Sánchez (Contemp.)

Theodore Caruel (1830-1898)

Alexandre-Henri Gabriel de Cassini (1781-1832)

Antonio José Cavanilles (1745-1804)

Antonio José Cavanilles y Joseph Dombey (1742-1794)

Jacques Martin Cels (1743-1806)

Dominique Chaix (1730-1799)

Ludolf Adelbert von Chamisso (1781-1838)

Ludolf Adelbert von Chamisso y Diederich Franz Leonhard von Schlechtendal

Kenton Lee Chambers (1929-x)

Arthur O. Chater (1933-x)

Mohammad Nazeer Chaudhri (1932-x)

Francois Fulgis Chevallier (1796-1840)

Ren-Chang Ching (1899-x)

Robert Hippolyte Chodat (1865-1934)

Robert Henri Chodat y E. Wilczek (1867-1948)

Jacques Denis Choisy (1799-1859)

Carl Frederik Albert Christensen (1872-1942)

Carl F.A. Christensen y Carl J.F. Skottsberg

Konrad Hermann Heinrich Christ (1833-1933)

Joseph Philippe de Clairville (1742-1830)

Charles Baron Clarke (1832-1906)

Robert Theodore Clausen (1911-x)

Dominique Clos (1821-1908)

Alfredo E. Cocucci (Contemp.)

Luigi Aloysius Colla (1766-1848)

Orazio Comes (1848-1917)

Philibert Commerson (1727-1773)

Hans Joachim Conert (1929-x)

133

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Const.

Copel.

Corn.

Correa

Corréa, ]J.

Coss. et Dur.

Coult. et Rose

Cout.

Crisci

Cronq.

Crosa

Cuatr.'

Cunn.

Curtis, M.

Curtis

D'Arcy

D'Urv.

Dahlst.

Dammer

Dandy

Davy

DC.

DE, A.

DE: E:

Dcne.

De la Sota

De Laub.

De Paula

De Wild.

Del.

Delar.

Dempst.

Dempst. et Ehrend.

Den Hartog

Desc.

Desc. et Bors.

Desf.

Desp.

Desr.

Desyv.

Desv., A.N.

Diels

Diem

Diem et Licht.

Dietr., A.

Dietr., D.

Dietr., W.

Doell

Doelz

Dombr.

Domin

Lincoln Constance (1909-x)

Edwin Brigham Copeland (1873-1964)

Edige Norbert Cornelissen (1769-1849)

Maevia Noemí Correa (Contemp.)

José Francisco Corréa da Serra (1751-1823)

Ernest Saint-Charles Cosson (1819-1899) y Michel Charles Durieu de Maison-

neuve (1796-1878)

John Merle Coulter (1851-1928) y Joseph Nelson Rose

Antonio Xavier Pereira Coutinho (1851-1939)

Jorge Víctor Crisci (Contemp.)

Arthur Cronquist (1919-x)

Orfeo Crosa (Contemp.)

José Cuatrecasas (1903-x)

Allan Cunningham (1791-1838)

Moses Ashley Curtis (1808-1872)

William Curtis (1746-1799)

William Gerald D'Arcy (1931-x)

Jules Sebastien Cesar Dumont d'Urville (1790-1842)

Hugo G.A. Dahlstedt (1856-1934)

Carl Lebrecht Udo Dammer (1860-1920)

James Edgar Dandy (1903-1976)

Joseph Burtt Davy (1870-1940)

Augustin Pyramus de Candolle (1778-1841)

Alphonse Louis Pierre Pyramus de Candolle (1806-1893)

Anne Casimir Pyramus de Candolle (1836-1918)

Joseph Decaisne (1807-1882)

Elías Ramón de la Sota (1933-x)

David John de Laubenfels (1925-x)

María Elena de Paula (1940-x)

Emile Auguste Joseph de Wildeman (1866-1947)

Alire Delile (1778-1850)

Francois Delaroche (1780-1813)

Lauramay Tinsley Dempster (1905-x)

Lauramay T. Dempster y Friedrich Ehrendorfer

Cornelis den Hartog (1931-x)

Horacio Raúl Descole (1910-x)

Horacio R. Descole y Olga Elena Borsini

Rene Louiche Desfontaines (1750-1833)

Narcisse Henri Francois Desportes (1776-1856)

Louis Auguste Joseph Desrousseaux (1753-1838)

Etienne-Emíle Desvaux (1830-1854)

Nicaise Auguste Desvaux (1784-1856)

Friedrich Ludwig Emil Diels (1874-1945)

José Diem (1899-x)

José Diem y Juana S. de Lichtenstein

Albert Gottfried Dietrich (1795-1856)

David Nathanael Friedrich Dietrich (1799-1888)

Werner Dietrich (Contemp.)

Johann Christoph Doell (1808-1885)

V. Bruno Doelz (?-1945)

H. Honywood Dombrain (fl. 1862)

Karel Domin (1882-1953)

134

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Don, D.

Don, G.

Don. et Rowl.

Donald

Dougl.

Druce

Drude

Duby

Duch.

Duchart.

Dudley

Duek

Duham.

Duke

Dum.

Dum. Cours.

Dunal

Dusén

Dusén et Skottsb.

Eastw.

Edmonds

Edwin

Ehrend.

Ehrh.

Eichler

Eifert

Ekman

Elliott

Engelm.

Engelm. et Gray

Engler

Epling

Ertter

Escal.

Esp.

Fabris

Farw.

Fassett

Fedde

Fée

Fenzl

Fern.

Fisch. et Mey.

Florin

Flueggé

Focke

Foerst.

Follm.

Forssk.

Forster, G.

Forster, J.R. et G.

David Don (1799-1841)

George Don (1798-1856)

John D. Donald y Gordon Douglas Rowley (Contemp.)

J.D. Donald (1923-x)

David Douglas (1798-1834)

George Claridge Druce (1850-1932)

Carl Georg Oscar Drude (1852-1933)

Jean Etienne Duby (1798-1885)

Antoine Nicolas Duchesne (1747-1827)

Pierre Ettienne Simon Duchartre (1811-1894)

Theodore R. Dudley (1936-x)

Jacobo Jack Duek (1936-x)

Henri Louis Duhamel du Monceau (1700-1782)

James A. Duke (1929-x)

Barthelemy Charles Joseph Dumortier (1797-1878)

Georges Louis Marie Dumont de Courset (1746-1824)

Michel Félix Dunal (1789-1856)

Per Karl Hjalmar Dusén (1855-1926)

Per K.H. Dusén y Carl J.F. Skottsberg

Alice Eastwood (1859-1953)

Jennifer M. Edmonds (Contemp.)

Gabriel Edwin (1926-x)

Friedrich Ehrendorfer (1927-x)

Jakob Friedrich Ehrhart (1742-1795)

August Wilhelm Eichler (1839-1887)

Imre Janos Eifert (1934-x)

Erik Leonard Ekman (1883-1931)

Stephen Elliott (1771-1830)

George Engelmann (1809-1884)

George Engelmann y Asa Gray

Heinrich Gustav Adolf Engler (1844-1930)

Carl Clawson Epling (1894-1968)

Barbara Ertter (Contemp.)

Manuel G. Escalante (Contemp.)

Marcial R. Espinosa (1874-1959)

Humberto A. Fabris (1924-1976)

Oliver Atkins Farwell (1867-1944)

Norman Carter Fassett (1900-1954)

Friedrich Karl Georg Fedde (1873-1942)

Antoine Laurent Apollinaire Fée (1789-1874)

Eduard Fenzl (1808-1879)

Merritt Lyndon Fernald (1873-1950)

Friedrich Ernst Ludwig von Fischer (1782-1854) y Carl Anton von Meyer

(1795-1855)

Carl Rudolf Florin (1894-1965)

Johann Flueggé (1775-1816)

Wilhelm Olbers Focke (1834-1922)

Carl Friedrich Foerster (1865-1918)

Gerhard Follmann (Contemp.)

Per Forsskal (1732-1763)

Johann Georg Adam Forster (1754-1794)

Johann Reinhold Forster (1729-1798) y Johann Georg Adam Forster

135

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Fosberg

Foster

Fourn.

Franchet

Friedr. et Rowl.

Fries

Fries, R.E.

Froel.

Gaertn.

Gaertn., C.

Gaertn., Mey. et Scherb.

Gand.

Garcke

Gaud.

Gaudin

Gay

Gay, J.

Gilg

Gilg et Muschl.

Gilib.

Gill.

Gill. et Hook.

Gingins

Gleisn. et Ric.

Gmel., C.C.

Gmel., J.F.

Godron

Goldbl.

Goldm.

Gómez-Sosa

Gooden.

Goodsp.

Gouan

Gould

Gould et Clark

Graebn.

Graham

Grand).

Grant

Grant, A.

Grau

Grau et Bayer

Grau et Gronb.

Gray, A.

Gray, S.F.

Greene

Greenm.

Greuter

Grimm

Griseb.

Gross

Francis Raymond Fosberg (1908-x)

Robert Chichton Foster (1904-x)

Eugene Pierre Nicolas Fournier (1834-1884)

Adrien René Franchet (1834-1900)

Hans Friedrich (1925-x) y Gordon Douglas Rowley

Elias Magnus Fries (1794-1878)

Klas Robert Elias Fries (1876-1966)

Joseph Aloys von Froelich (1766-1841)

Joseph Gaertner (1732-1791)

Carl Friedrich von Gaertner (1772-1850)

Philipp Gottfried Gaertner (1754-1825), Bernhard Meyer (1767-1836) y Johan-

nes Scherbius (?-1813)

Michel Gandoger (1850-1926)

Christian August Friedrich Garcke (1819-1904)

Charles Gaudichaud-Beaupré (1789-1854)

Jean Francois Aimé Philippe Gaudin (1766-1833)

Claude Gay (1800-1873)

Jacques Etienne Gay (1786-1864)

Ernst Friedrich Gilg (1867-1933)

Ernst Friedrich Gilg y Reinhold Conrad Muschler

Jean Emmanuel Gilibert (1741-1814)

John Gillies (1792-1834)

John Gillies y William Jackson Hooker

Frederic-Charles-Jean Gingins de la Sarraz (1790-1863)

Gudula Gleisner (Contemp.) y Mario Ricardi

Carl Christian Gmelin (1762-1837)

Johann Friedrich Gmelin (1748-1804)

Dominique Alexandre Godron (1807-1880)

Peter Goldblatt (1943-x)

J.G. Goldman (1818-1848)

Edith Gómez-Sosa (Contemp.)

Samuel Goodenough (1743-1827)

Thomas Harper Goodspeed (1887-1966)

Antoine Gouan (1733-1821)

Frank Walton Gould (1913-1981)

Frank Walton Gould y Carolin A. Clark (Contemp.)

Karl Otto Robert Peter Paul Graebner (1871-1933)

John Graham (1805-1839)

Gertrud Grandjot (fl. 1934)

Verne Grant (1917-x)

Adele Lewis Grant (1881-1969)

Juerke Grau (Contemp.)

Juerke Grau y Ehrentraud Bayer

Juerke Grau y Eva Gronbach (Contemp.)

Asa Gray (1818-1888)

Samuel Frederick Gray (1766-1828)

Edward Lee Greene (1843-1915)

Jesse More Greenman (1867-1951)

Werner Greuter (1938-x)

Johann Friedrich Karl Grimm (1737-1821)

August Heinrich Grisebach (1814-1879)

Rudolf Gross (1872-?)

136

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Guagl.

Guerke

Guill.

Gunckel

Gunn.

H.B.K.

H. et A.

A. et B.

Hackel

Hackel et Arech.

Haenke

Hagstr.

Hall

Haller f.

Hallier

Hamilt.

Hand.-Mazz.

Hansen

Hanst.

Harv.

Hassk.

Hast.

Haum.

Haum. et Parodi

Hausskn.

Haw.

Hawkes

Hayek

Heer.

Hegelm.

Heine

Hemsl.

Henr.

Herb.

Herrm.

Herter

Heyw.

Hicken

Hieron.

Hill, A.W.

Hill, J.

Hilldm.

Hitchc.

Elitehc., C.

Hochr.

Hochst.

Hoeck

Hoffm., O.

Hoffm., O. et Dusén

Hoffmanns.

Hombr. et Jacq.

Encarnación Rosa Guaglianone (Contemp.)

Robert Louis August Maximilian Guerke (1854-1911)

Jean Baptiste Antoine Guillemin (1796-1842)

Hugo Gunckel (1901-x)

Johan Ernst Gunnerus (1718-1773)

F.W.H. Alexander von Humboldt, Aimé J.A. Bonpland y Carl Sigismund Kunth

William Jackson Hooker y George Arnold Arnott

Friedrich Wilhelm Heinrich Alexander von Humboldt (1769-1859) y Aimé

Jacques Alexandre Bonpland

Eduard Hackel (1850-1926)

Eduard Hackel y José Arechavaleta y Balpardo

Peregrinus Xavierus Thaddaeus Haenke (1761-1817)

Johan Oskar Hagstroem (1860-1922)

Harvey Munroe Hall (1874-1932)

Albrecht von Haller, filius (1758-1823)

Hans Gottfried Hallier (1868-1932)

William Hamilton (1783-1856)

Heinrich, Freiherr von Handel-Mazzetti (1882-1940)

Bertel Hansen (1932-x)

Johannes Ludwig Emil Robert von Hanstein (1822-1880)

William Henry Harvey (1811-1866)

Justus Karl Hasskarl (181 1-1894)

George Tracy Hastings (fl. 1905)

Lucien Hauman (1880-1965)

Lucien Hauman y Lorenzo R. Parodi

Heinrich Carl Haussknecht (1838-1903)

Adrian Hardy Haworth (1768-1833)

John Gregory Hawkes (1915-x)

August von Hayek (1871-1928)

Christian August Heering (1876-1916)

Christoph Friedrich Hegelmaier (1833-1906)

Hermann-Heino Heine (1922-x)

William Botting Hemsley (1843-1924)

Jan Theodoor Henrard (1881-1974)

William Herbert (1778-1847)

Johann Herrmann (1738-1800)

Wilhelm (Guillermo) Gustav Franz Herter (1884-1958)

Vernon Hilton Heywood (1927-x)

Cristóbal María Hicken (1875-1933)

Georg Hans Emmo Wolfgang Hieronymus (1846-1921)

Arthur William Hill (1875-1941)

John Hill (1716-1775)

H. Hilldmann (fl. 1900)

Albert Spear Hitchcock (1865-1935)

Charles Leo Hitchcock (1902-x)

Benedict Pierre Georges Hochreutiner (1873-1959)

Christian Ferdinand Hochstetter (1787-1860)

Fernando Hoeck (1858-1915)

Karl August Otto Hoffmann (1853-1909)

Karl August Otto Hoffmann y Per Karl Hjalmar Dusén

Johan Centurius Hoffmannsegg (1766-1849)

Jacques Bernard Hombron (1800-1852) y H. Jacquinot (1814-1887)

137

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Honck. Gerhard August Honckeny (1724-1805)

Hook. William Jackson Hooker (1785-1865)

Hook. et Grev. William Jackson Hooker y Robert Kaye Greville (1794-1866)

Hook. f. Joseph Dalton Hooker (1817-1911)

Hope John Hope (1725-1786)

Hoppe David Heinrich Hoppe (1760-1846)

Hornem. Jens Wilken Hornemann (1770-1841)

Hubb. Charles Edward Hubbard (1900-1980)

Hudson William Hudson (1730-1793)

Hughes D.K. Hughes (1899-1932)

Hultén Erik Oskar Gunnar Hultén (1894-1981)

Hunz. Armando Teodoro Hunziker (1919-x)

Hutch. Paul C. Hutchison (1924-x)

Hy]. Nils Hylander (1904-1970)

Ingram John William Ingram (1924-x)

Irw. et Barneby Howard Samuel Irwin (1928-x) y Rupert Charles Barneby

Ito Yoshiharu Ito (Contemp.)

Iwatz. Kunio Iwatzuki (1934-x)

Jacks. Benjamin Daydon Jackson (1846-1927)

Jacobi G.A. Jacobi (fl. 1856)

Jacq. Nikolaus Joseph, Baron von Jacquin (1727-1817)

Jacq. f. Joseph Franz, Baron von Jacquin (1766-1839)

Jalas Jaakko Jalas (1920-x)

Job María M. Job (Contemp.)

Johnst. Ivan Murray Johnston (1898-1960)

Johow Friedrich Richard Adalbert Johow (1859-1933)

Juss., A.H.L. Adrien Henri Laurent de Jussieu (1797-1853)

Juss., A.L. Antoine Laurent de Jussieu (1784-1836)

Kalela Aino Aarno Antero Kalela (1908-1977)

Karw. Wilhelm Karwinsky (1799-1855)

Kaulf. Georg Friedrich Kaulfuss (1786-1830)

Kausel Eberhard Max Leopold Kausel (1912-1972)

Kearney Thomas Henry Kearney (1874-1956)

Keck David Daniels Keck (1903-x)

Kellogg Albert Kellogg (1813-1887)

Keng Yi Li Keng (1897-x)

Ker-Gawl. John Ballenden Ker (hasta 1804, John Gawler) (1764-1842)

Keyserl. Alexander Friedrich Michael Leberecht Arthur von Keyserling (1851-1891)

Kilian Guenter Kilian (1960-x)

Kirk Thomas Kirk (1828-1898)

Kitag. Masao Kitagawa (1909-x)

Klatt Friedrich Wilhelm Klatt (1825-1897)

Klotzsch Johann Friedrich Klotzsch (1805-1860)

Klotzsch et Garcke Johann Friedrich Klotzsch y Christian August Friedrich Garcke

Kneucker Johann Andreas Kneucker (1862-1946)

Knuth Reinhard Gustav Paul Knuth (1874-1957)

Koch Wilhelm Daniel Joseph Koch (1771-1849)

Koch, K. Karl Heinrich Emil Koch (1809-1879)

Koehne Bernhard Adalbert Emil Koehne (1848-1918)

Koern. Friedrich August Koernicke (1828-1908)

Kopp Lucille E. Kopp (Contemp.)

Kosterm. André Joseph Gillaume Henri Kostermans (1907-x)

138

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Koyama

Kraenzl.

Krajina

Krap.

Krasser

Krause

Kreuz.

Kuek.

Kuhn

Kunkel

Kunth

Kunth et Bouché

Kunze

Kurtz

Kuschel

I'Hérit.

A

e.

Lab.

Labill.

Lag.

Lah.

Lam.

Landrum

Laterr.

Lechler

Ledeb.

Lefor

Legr. et Kaus.

Lehm.

Lej. et Court.

Lem.

Lembcke

Lembcke et Back.

Lemoine

Less.

Lev.

Levyns

Lewis et Lewis

Leyb.

Licht.

Liebm.

Lightf.

Lindl.

Lindman

Link

Linke

Tetsuo Michael Koyama (1933-x)

Friedrich Wilhelm Ludwig Kraenzlin (1847-1934)

Vladimir Joseph Krajina (1905-x)

Antonio Krapovickas (Contemp.)

Fridolin Krasser (1863-1922)

Ernst Hans Ludwig Krause (1859-1942)

K.G. Kreuzinger (fl. 1941)

Georg Kuekenthal (1864-1955)

Friedrich Adalbert Maximilian Kuhn (1842-1894)

Guenther Kunkel (1928-x)

Carl Sigismund Kunth (1788-1850)

Carl Sigismund Kunth y Carl David Bouché (1809-1881)

Gustav Kunze (1793-1851)

Fritz Kurtz (1854-1920)

Guillermo Kuschel (Contemp.)

Charles-Louis L'Héritier de Brutelle (1746-1800)

Carl Linnaeus (1707-1778)

Carl Linnaeus, filius (1741-1783)

J. Labouret (fl. 1858)

Jacques Julien Houtton de Labillardiere (1775-1834)

Mariano Lagasca y Segura (1776-1839)

Jean Jacques Charles de Laharpe (1802-1877)

Jean Baptiste Antoine Monet de Lamarck (1744-1829)

Leslie R. Landrum (1946-x)

Jean-Francois Laterrade (1784-1858)

Wilibald Lechler (1814-1856)

Carl Friedrich von Ledebour (1785-1851)

Michael William Lefor (Contemp.)

Diego Legrand (Contemp.) y Eberhard Max Leopold Kausel

Johann Georg Christian Lehmann (1792-1860)

Alexandre Louis Simon Lejeune (1779-1858) y Richard Joseph Courtois (1806-

1835)

Charles Lemaire (1800-1871)

H. Lembcke (Contemp.)

H. Lembcke y Curt Backeberg

Pierre Louis Victor Lemoine (1823-1911)

Christian Friedrich Lessing (1809-1862)

Augustin Abel Hector Léveillé (1863-1918)

Margaret Rutherford Bryan Levyns (1890-1975)

Arlan Lewis (1919-x) y Margaret Ruth Ensing Lewis (1919-x)

Friedrich Leybold (1827-1879)

Juana S. de Lichtenstein (1902-x)

Frederik Michael Liebmann (1813-1856)

John Lightfoot (1735-1788)

John Lindley (1799-1865)

Carl Axel Magnus Lindman (1856-1928)

Johann Heinrich Friedrich Link (1761-1851)

August Linke (fl. 1855)

Conrad Loddiges (1738-1824)

Ludwig Eduard Theodor Loesener (1865-1941)

Askell Lóve (1916-x)

Doris Benta María Lóve (1918-x)

139

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Looser

Lorentz

Loud.

Louis-Marie

Lourt.

Lourt., O'Don. et Sleum.

Lowe

Macbr.

Mahu

Maire et Weill.

Malme

March.

Mariano

Marsh.

Marsson

Mart.

Mart.-Lab

Martens

Martens et Gal.

Martc. et Arroyo

Martic. et Quez.

Masters

Math. et Const.

Mattf.

Matthei

Maxon

Medik.

Meigen

Meisn.

Menz.

Mérat

Merr.

Mett.

Mey., C.A.

Mey., E.

Mey., G.

Meyen

Meyen et Walp.

Mez

Michx.

Mieck.

Miers

Mildner

Mildner et Rogers

Mill.

Millán

Mig.

Mirb.

Moench

Mol.

Mold.

Monv.

Gualterio Looser (1898-1982)

Paul Gunther Lorentz (1835-1881)

John Claudius Loudon (1783-1843)

Father Louis-Marie (1896-x)

Alicia Lourteig (1913-x)

Alicia Lourteig, Carlos Alberto O'Donell y Hermann Otto Sleumer

Richard Thomas Lowe (1802-1874)

James Francis Macbride (1892-1976)

Manuel Mahu (Contemp.)

René Charles Joseph Ernest Maire (1878-1949) y Marc Weiller (1880-1945)

Gustav Oskar Andersson Malme (1864-1937)

Nestor Léon Marchand (1833-1911)

María del Carmen Mariano (Contemp.)

William Taylor Marshall (fl. 1947)

Theodor Friedrich Marsson (1816-1892)

Carl Friedrich Phillip von Martius (1794-1868)

Juan B. Martínez-Laborde (Contemp.)

Martin Martens (1797-1863)

Martin Martens y Henri Guillaume Galeotti (1814-1858)

Clodomiro Marticorena (1929-x) y Mary Therese Kalin Arroyo (1944-x)

Clodomiro Marticorena y Max Quezada

Maxwell Tylden Masters (1833-1907)

Mildred Ester Mathias (1906-x) y Lincoln Constance

Johannes Mattfeld (1895-1951)

Oscar Rodolfo Matthei (1935-x)

William Ralph Maxon (1877-1948)

Friedrich Kasimir Medikus (1736-1808)

Fritz Meigen (1864->)

Carl Friedrich Meisner (después de 1861, Meissner) (1800-1874)

Archibald Menzies (1754-1842)

Francois Victor Mérat de Vaumartoise (1780-1851)

Elmer Drew Merrill (1876-1956)

Georg Heinrich Mettenius (1823-1866)

Carl Anton von Meyer (1795-1855)

Ernst Heinrich Friedrich Meyer (1791-1858)

Georg Friedrich Wilhelm Meyer (1782-1856)

Franz Julius Ferdinand Meyen (1804-1840)

Franz Julius Ferdinand Meyen y Wilhelm Gerhard Walpers

Carl Christian Mez (1866-1944)

Francois André Michaux (1770-1855)

W. Mieckley (fl. 1907)

John Miers (1789-1879)

R.A. Mildner (Contemp.)

R.A. Mildner y Claude Marvin Rogers

Philip Miller (1691-1771)

Aníbal Roberto Millán (1892-x)

Friedrich Anton Wilhelm Miquel (1811-1871)

Charles Francois Brisseau Mirbel (1776-1854)

Conrad Moench (1744-1805)

Juan Ignacio Molina (1740-1829)

Harold Norman Moldenke (1909-x)

— Monville (fl. 1840)

140

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Moore Thomas Moore (1821-1887)

Moore, D.M. David Moresby Moore (1933-x)

Moore, D.M. et Lewis David Moresby Moore y Arlan Lewis

Moore, D.M. et Yates David Moresby Moore y Bronwen Yates (1948-x)

Moore, D.M. et Chater David Moresby Moore y A.O. Chater

Moore, D.M. et Dogg. David Moresby Moore y M.C. Doggett (1951-x)

Moq. Christian Horace Benedict Alfred Moquin-Tandon (1804-1863)

Moretti Giuseppe Moretti (1782-1853)

Moris Giuseppe Giacinto Moris (1796-1869)

Morton Conrad Vernon Morton (1905-1972)

Muehlenpf. F. Muehlenpfordt (fl. 1848)

Muell., F. Ferdinand Jacob Heinrich von Mueller (1825-1896)

Muell.-Arg. Jean Mueller, llamado Argoviensis (1828-1896)

Muell. et Lef. Philipp Jacob Mueller (1832-1889) y Louis Victor Lefevre (1810-?)

Munhl. Gotthilf Henry Ernest Muhlenberg (1753-1815)

Muller Cornelius Herman Muller (1909-x)

Muñoz Carlos Muñoz (1913-1976)

Munro William Munro (1818-1880)

Munz Philip Alexander Munz (1892-1974)

Munz et Johnst. Philip Alexander Munz e Ivan Murray Johnston

Murb. Svante Samuel Murbeck (1859-1946)

Murr Joseph Murr (1864-1932)

Murray Johann Andreas Murray (1740-1791)

Muschl. Reinhold Conrad Muschler (1883-1957)

Mutis José Celestino Mutis (1732-1811)

Naeg. et Peter Carl Wilhelm Naegeli (1817-1891) y Albert Peter (1853-1937)

Nannf. John Axel Frithiof Nannfeldt (1904-x)

Nash George Valentine Nash (1864-1921)

Naud. Charles Victor Naudin (1815-1899)

Navas Luisa Eugenia Navas (Contemp.)

Nees Christian Gottfried Daniel Nees von Esenbeck (1776-1858)

Nees et Meyen Christian Gottfried Daniel Nees von Esenbeck y Franz Julius Ferdinand Meyen

Neger Franz Wilhelm Neger (1868-1923)

Nelmes Ernst Nelmes (1895-1959)

Nels. et Macbr. Aven Nelson (1859-1952) y James Francis Macbride

Nic. et Rúg. Elisa G. Nicora y Zulma E. Rúgolo

Nichols. George Nicholson (1847-1908)

Nicora Elisa G. Nicora (1912-x)

Nied. Franz Joseph Niedenzu (1857-1937)

Niederl, Gustavo Niederlein (1858-1924)

Norl. Nils Tycho Norlindh (1906-x)

Nowicke Joan W. Nowicke (Contemp.)

Nutt. Thomas Nuttall (1786-1859)

Nyman Charles Friedrich Nyman (1820-1893)

O'Donell Carlos Alberto O'Donell (1912-1954)

O.K. Carl Ernst Otto Kuntze (1849-1907)

Oehme H. Oehme (fl. 1940)

Oerst Anders Sandoe Oersted (1816-1872)

Orch Anthony E. Orchard (Contemp.)

Ort. Casimiro Gómez Ortega (1748-1818)

Osten et Barros

Otto

Cornelius Osten (1863-1936) y Manuel Barros

Christoph Friedrich Otto (1783-1856)

141

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Otto et Dietr. Christoph Friedrich Otto y Albert Gottfried Dietrich

Ownbey Gerald Bruce Ownbey (1916-x)

ESctE: Eduard Friedrich Poeppig y Stephan Ladislaus Endlicher (1804-1849)

Pallas Peter Simon Pallas (1741-1811)

Papp Constantin Papp (1896-1972)

Parlat. Filippo Parlatore (1816-1877)

Parodi Lorenzo Raimundo Parodi (1895-1966)

Parodi et Nicora Lorenzo Raimundo Parodi y Elisa G. Nicora

Parris B.S. Parris (1945-x)

Pax Ferdinand Albin Pax (1858-1942)

Pax et K. Hoffm. Ferdinand Albin Pax y Kaethe Hoffmann (fl. 1912-1924)

Ped. Troels Myndel Pedersen (1916-x)

Pennell Francis Whittier Pennell (1886-1952)

Pér.-Mor. Roman A. Pérez-Moreau (1905-1975)

Pers. Christiaan Hendrik Persoon (1762-1836)

Peterm. Wilhelm Ludwig Petermann (1806-1855)

Pfeiffer Hans Heinrich Pfeiffer (1896-x)

Pfeiffer, L. Ludwig Karl Georg Pfeiffer (1805-1877)

Phil. Rudolph Amandus Philippi (1808-1904)

Phil" E: Federico Philippi (1838-1910)

Pic: Ser. Rodolpho Emilio Giuseppe Pichi-Sermolli (1912-x)

Pic.-Ser. et Bizz. Rodolpho E.G. Pichi-Sermolli y María Paola Bizzarri (1937-x)

Pilger Robert Knuds Pilger (1876-1950)

Piper Charles Vancouver Piper (1867-1926)

Pisano Edmundo Pisano (Contemp.)

Piso Willem Piso (ca. 1611-1678)

Pitard Charles J. Pitard (1873-1927)

Planch. Jules Emile Planchon (1823-1888)

Poepp. Eduard Friedrich Poeppig (1798-1868)

Poepp. et Hausskn. Eduard Friedrich Poeppig y Heinrich Carl Haussknecht

Poepp. et Kunth Eduard Friedrich Poeppig y Carl Sigismund Kunth

Porr. Jean Louis Marie Poiret (1755-1834)

Pontir. Aida Pontiroli (Contemp.)

Poselg. Heinrich Poselger (1818-1883)

Pott Johan Friedrich Pott (1738-1805)

Potztal Eva Potztal (1924-x)

Pour. Pierre André Pourret de Figeac (1754-1818)

Prantl Karl Anton Eugen Prantl (1849-1893)

Presl, J. Jan Swatopluk Presl (1791-1849)

Eres]. et K: Jan Swatopluk Presl y Karel Boriwag Presl

Presl, K. Karel Boriwag Presl (1794-1852)

Prog. August Progel (1829-1889)

Pursh Fredrick Traugott Pursh (1774-1820)

Quez. et Martic. Max Quezada (1936-x) y Clodomiro Marticorena

Ret P: Hipólito Ruiz (1754-1815) y José Antonio Pavón (1754-1844)

Raeuschel Ernest Adolph Raeuschel (fl. 1797)

Rafin. Constantin Samuel Rafinesque-Schmaltz (1783-1840)

Rahn Knud Rahn (1927-x)

Raimann Rudolf Raimann (1863-1896)

Rapin Daniel Rapin (1799-1882)

Raspail Francois Vincent Raspail (1791-1878)

Rattan Volney Rattan (1840-1915)

142

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Rausch. Stephen Rauschert (1931-x)

Raven Peter Hamilton Raven (1936-x)

Raven et Moore Peter Hamilton Raven y David Moresby Moore

Ravenna Pierfelice Ravenna (1938-x)

Rech. Karl Rechinger (1867-1952)

Rech. f. Karl Heinz Rechinger (1906-x)

Regel Eduard August von Regel (1815-1892)

Regel et Koern. Eduard August von Regel y Friedrich August Koernicke

Regel et Schmidt Eduard August von Regel y E. Schmidt (fl. 1880)

Rehder Alfred Rehder (1863-1949)

Reichard Johann Jakob Reichard (1743-1782)

Reiche Karl Friedrich Reiche (1860-1929)

Reichenb. f. Heinrich Gustav Reichenbach (1824-1889)

Remy Ezechiel Jules Remy (1826-1893)

Remy et Fée Ezechiel Jules Remy y Antoine Laurent Apollinaire Fée

Rendle Alfred Barton Rendle (1865-1938)

Renjifo Carlos Renjifo (fl. 1884)

Req. Esprit Requien (1788-1851)

Retz. Anders Jahan Retzius (1742-1821)

Ric. et Martic. Mario Ricardi y Clodomiro Marticorena

Ric. et Quez. Mario Ricardi y Max Quezada

Ric. et Weldt Mario Ricardi y Eduardo Weldt (Contemp.)

Ricardi Mario Ricardi (1921-x)

Rich. Louis Claude Marie Richard (1754-1821)

Rich., A. Achille Richard (1794-1852)

Richardson Alfred T. Richardson (Contemp.)

Richt. Karl Richter (1855-1891)

Ritter Friedrich Ritter (1898-x)

Rob., B.L. Benjamin Lincoln Robinson (1864-1935)

Rockh. M. Rockhausen (fl. 1939)

Rodr. Roberto Antonio Rodríguez (1944-x)

Roem. et Schult. Johann Jakob Roemer (1763-1819) y Joseph August Schultes (1773-1831)

Rogers et Mildner Claude Marvin Rogers (1919-x) y R.A. Mildner

Rohrb. Paul Rohrbach (1847-1871)

Roiv. Heikki Roivainen (1900-x)

Rolfe Robert Allen Rolfe (1855-1921)

Rolleri Cristina Rolleri (Contemp.)

Rollins Reed Clark Rollins (1911-x)

Romanc. María Cristina Romanczuk (Contemp.)

Rose Joseph Nelson Rose (1862-1928)

Ross Hermann Ross (1862-1942)

Rossb. Ruth Rossbach (1912-x)

Rossow Ricardo A. Rossow (Contemp.)

Roth Albrecht Wilhelm Roth (1757-1834)

Rothm. Werner Rothmaler (1908-1962)

Rottb. Christen Friis Rottboel (1727-1797)

Rowlee Willard Winfield Rowlee (1861-1923)

Roxb. William Roxburgh (1751-1815)

Royen Pieter van Royen (Contemp.)

Ruempl. Theodor Ruempler (1817-1891)

Rúg. et De Paula Zulma E. Rúgolo y María Elena de Paula

Rúgolo Zulma E. Rúgolo (1940-x)

143

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Rusby

Rydb.

Sadeb.

Salm-Dyck

Samuels.

Sandw.

Savi

Savigny

Sch. Bip.

Schauer

Scheele

Schenck

Schiede

Schindler

Schinz et Thell.

Schkuhr

Schlecht.

Schlechter

Schm., F.

Schnack et Covas

Schneid.

Schott

Schouten et Veldk.

Schrad.

Schrank

Schrank et Mart.

Schreb.

Schúb. et Martens

Schult.

Schultz, F.

Schulz, O.EF.

Schum.

Schur

Schweig.

Scop.

Scott.

Scribn.

Seem.

Sendt.

Senn. et Maur.

Ser.

Sherff

Sibth.

Sieb.

Sims

Skottsb.

Sleumer

Soap:

Sm., H.

Sm., J.

Sm., J.E.

Sm., L.B.

Henry Hurd Rusby (1855-1940)

Per Axel Rydberg (1860-1931)

Richard Emil Benjamin Sadebeck (1839-1905)

Joseph Maria Franz Anton Hubert Ignaz zu Salm-Reifferschied Dyck (1773-

1861)

Gunnar Samuelsson (1885-1944)

Noel Yvri Sandwith (1901-1965)

Gaetano Savi (1769-1844)

Marie Jules Cesar Lelorgne de Savigny (1777-1851)

Carl Heinrich Schultz “Bipontinus' (1805-1867)

Johann Konrad Schauer (1813-1848)

Georg Henrich Adolph Scheele (1808-1864)

Martin Schenck (fl. 1907)

Christian Julius Wilhelm Schiede (1798-1836)

Anton Karl Schindler (1879-1964)

Hans Schinz (1858-1941) y Albert Thellung

Cristian Schkuhr (1741-1811)

Diederich Franz Leonhard von Schlechtendal (1794-1866)

Friedrich Richard Rudolph Schlechter (1872-1925)

Franz Willibald Schmidt (1764-1796)

Benno Julio Christian Schnack (1910-1981) y Guillermo Covas (1915-x)

Camillo Karl Schneider (1876-1951)

Heinrich Wilhelm Schott (1794-1865)

Yolanda Schouten (Contemp.) y Jan Frederik Veldkamp

Heinrich Adolf Schrader (1767-1836)

Franz von Paula von Schrank (1747-1835)

Franz von Paula von Schrank y Carl Friedrich Phillip von Martius

Johann Christian Daniel Schreber (1739-1810)

Gustav Schúbler (1787-1834) y Georg Mathias von Martens (1788-1872)

Julius Herman Schultes (1804-1840)

Friedrich Wilhelm Schultz (1804-1876)

Otto Eugen Schulz (1874-1936)

Karl Moritz Schumann (1851-1904)

Philipp Johann Ferdinand Schur (1799-1878)

August Friedrich Schweigger (1783-1821)

Giovanni Antonio Scopoli (1723-1788)

A.J. Scott (Contemp.)

Frank Lamson-Scribner (1851-1938)

Berthold Carl Seemann (1825-1871)

Otto Sendtner (1813-1859)

Frére Sennen (1861-1937) y Frere Mauricio (fl. 1933)

Nicolas-Charles Seringe (1776-1858)

Earl Edward Sherff (1886-1966)

John Sibthorp (1758-1796)

Franz Wilhelm Sieber (1785-1844)

John Sims (1749-1831)

Carl Johan Fredrik Skottsberg (1880-1963)

Hermann Otto Sleumer (1906-x)

Charles Piper Smith (1877-1955)

Karl August Harald Smith (1889-x)

John Smith (1798-1888)

James Edward Smith (1759-1828)

Lyman Bradford Smith (1904-x)

144

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Smith et Looser Lyman Bradford Smith y Gualterio Looser

Soehr. Johannes Soehrens (fl. 1915)

Sojak Jiri Sojak (1936-x)

Soland. Daniel Carl Solander (1733-1782)

Solbrig Otto Thomas Solbrig (1930-x)

Solereder Hans Solereder (1860-1920)

Solms Hermann Maximilian Carl Ludwig Friedrich zu Solms-Laubach (1842-1915)

Soriano Alberto Soriano (1919-x)

Spach Edouard Spach (1801-1879)

Sparre Benkt Sparre (1918-x)

Speg. Carlos Spegazzini (1858-1926)

Speg. et Kraenzl. Carlos Spegazzini y Friedrich Wilhelm Ludwig Kraenzlin

Sprague Thomas Archibald Sprague (1877-1958)

Spreng. Kurt Polycarp Joachim Sprengel (1766-1833)

St.-Amans Jean Florimond Boudon de Saint-Amans (1748-1831)

St.-Hil. Auguste Francois Cesar Prouvencal de Saint-Hilaire (1779-1853)

St.-John Harold Saint-John (1892-x)

St.-Y ves Alfred Saint-Yves (1855-1933)

Standl. Paul Carpenter Standley (1884-1963)

Stapf Otto Stapf (1857-1933)

Staudt Guenter Staudt (fl. 1962)

Steud. Ernst Gottlieb Steudel (1783-1856)

Steven Christian Steven (1781-1863)

Stockes Jonathan Stockes (1755-1831)

Stuck. Teodoro Juan Vicente Stuckert (1852->)

Stuntz Stephen Conrad Stuntz (1875-1918)

Sturm Jacob Sturm (1771-1848)

Subils Rosa Subils (Contemp.)

Sudzuki Fusa Sudzuki (Contemp.)

Suess. Karl Suessenguth (1893-1955)

Sw. Olof Peter Swartz (1760-1818)

Swallen Jason Richard Swallen (1903-?)

Sweet Robert Sweet (1783-1835)

Swingle Walter Tennyson Swingle (1871-1952)

Taub. Paul Hermann Wilhelm Taubert (1862-1897)

en. Michele Tenore (1780-1861)

Thell. Albert Thellung (1881-1928)

Thell. et Aellen Albert Thellung y Paul Aellen

This.-Dyer William Turner Thiselton-Dyer (1843-1928)

Thomps. Charles Henry Thompson (1870-1931)

Thouars Louis-Marie Aubert Aubert du Petit-Thouars (1758-1831)

Thuill. Jean Louis Thuillier (1757-1822)

Thunb. Carl Peter Thunberg (1743-1828)

Tischler Georg Friedrich Leopold Tischler (1878-1955)

Torr. John Torrey (1796-1873)

Torr. et Gray John Torrey y Asa Gray

Tort, Roberto D. Tortosa (1946-x)

Traub Hamilton Paul Traub (1890-?)

Traub et Uphof Hamilton Traub y Johannes C.T. Uphof

Trev. Ludolf Christian Treviranus (1769-1864)

Trin. Carl Bernhard Trinius (1778-1844)

Trin. et Rupr. Carl Bernhard Trinius y Franz Joseph Ruprecht

145

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

Tryon

Túrpe

Tul.

Turcz.

Tutin

Ulbr.

Ulib.

Uline

Uphof

Urban

Urban et Gilg

Vahl

Van Tiegh.

Vatke

Vaupel

Veldk.

Vell.

Vent.

Verd.

Verdc.

Verlot

Vill.

Vis.

Viv.

Vogel

Volk.

Vuill.

Wanhlenb.

Waldst. et Kit.

Wallr.

Walp.

Walp. et Schauer

Walter

Walters

Wats., H.

Wats., S.

Weath.

Weber

Weber, A.

Weber, W.

Weberb.

Wedd.

Weibel

Weigel

Weinm.

Werd.

Wettst.

Willd.

Wimm., C. et Grab.

Wimmer

Rolla Milton Tryon (1916-x)

Ana María Túrpe (Contemp.)

Louis René Tulasne (1815-1885)

Nikolai Stepanovich Turczaninow (1796-1864)

Thomas Gaskell Tutin (1908-x)

Eberhard Ulbrich (1879-1952)

Emilio Agustin Ulibarri (Contemp.)

Edwin Burton Uline (1867-1933)

Johannes Cornelis Theodorus Uphof (Contemp.)

Ignatz Urban (1848-1931)

Ignatz Urban y Ernst Friedrich Gilg

Martin Vahl (1749-1804)

Philippe van Tieghem (1839-1914)

Georg Karl Wilhelm Vatke (1849-1889)

Friedrich Vaupel (1876-1927)

Jan Frederik Veldkamp (Contemp.)

José Mariano da Conceicao Vellozo (1742-1811)

Etienne Pierre Ventenat (1757-1808)

Inez Clare Verdoorn (1896-?)

Bernard Verdcourt (1925-x)

Jean Baptiste Verlot (1825-1891)

Dominique Villars (1745-1814)

Roberto de Visiani (1800-1878)

Domenico Viviani (1772-1840)

Julius Rudolph Theodor Vogel (1812-1841)

G.L.A. Volkens (1855-1917)

Beryl Simpson Vuilleumier (Contemp.)

Goeran Wahlenberg (1780-1851)

Franz Adam von Waldstein-Wartenberg (1759-1823) y Paul Kitaibel (1757-

1817)

Carl Friedrich Wilhelm Wallroth (1792-1857)

Wilhelm Gerhard Walpers (1816-1853)

Wilhelm Gerhard Walpers y Johann Konrad Schauer

Thomas Walter (1740-1789)

Stuart Mark Walters (1920-x)

Hewett Cottrell Watson (1804-1881)

Sereno Watson (1826-1892)

Charles Alfred Weatherby (1875-1949)

George Heinrich Weber (1752-1828)

Frederick Albert Constant Weber (1830-1903)

Wilhelm Weber (Contemp.)

August Weberbauer (1871-1948)

Hugh Algernon Weddell (1819-1877)

Raymond Weibel (1905-x)

Christian Ehrenfried von Weigel (1748-1831)

Johann Anton Weinmann (1782-1858)

Erich Werdermann (1892-1959)

Richard von Wettstein (1863-1931)

Carl Ludwig Willdenow (1765-1812)

Christian Friedrich Heinrich Wimmer (1803-1868) y Heinrich Emanuel Gra-

bowski (1792-1842)

Franz Elfried Wimmer (1881-1961)

146

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Witasek

Wittm.

Wolff

Yuncker

Zahlb.

Zahn

Zard.

Zoell.

Zucc.

Johanna A. Witasek (1865-1910)

Ludwig Wittmark (1839-1929)

Hermann Wolff (1866-1929)

Truman George Yuncker (1891-1964)

Alexander Zahlbruckner (1860-1893)

Karl Hermann Zahn (1865-1940)

Elsa Matilde Zardini (Contemp.)

Otto Zoellner (Contemp.)

Joseph Gerhard Zuccarini (1797-1848)

147

(e

Í

15

haha 2

3 DD o

Notas

149

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

(1)

(2)

(3)

(4)

(5)

(6)

Lithraea Endl. 1840 es una variante orto-

gráfica de Lithrea Miers ex H. et A. 1833.

Los nombres de los géneros y especies de

Cactaceae están basados principalmente

en las obras de C. Backeberg, Die Cacta-

ceae. Handbuch der Kakteenkunde. Jena.

6 vols., 1958-62 y Das Kakteenlexikon.

Enumeratio diagnostica Cactacearum. Je-

na. 741 pp., 18 mapas. 1966. Para Neopor-

terra se ha seguido a J.D. Donald y G.D.

Rowley, Reunion of the genus Neoporteria.

Cact. Succ. J. Gr. Brit. 28(3-4): 54-63.

1966. Debido a la complejidad de la taxo-

nomía de esta familia, a la enorme canti-

dad de géneros y de especies que se han

descrito y a la diversidad de puntos de

vista de los diferentes autores, la lista es

tentativa. Un trabajo reciente sobre Cacta-

ceae chilenas es el de F. Ritter, Kakteen in

Súdamerika. Band 3. Chile. Spangenberg.

Pp. 857-1238. 1982.

La presencia del género Zuccagnia en Chi-

le es dudosa.

Eupatorium glechonophyllum y E. salvia han

sido incluidos en los géneros Ageratina y

Ansteguwetía respectivamente por King y

Robinson. (Phytologia 29: 214. 1970; Phy-

tologia 30: 220. 1975).

Los materiales chilenos que generalmente

se han referido a Senecio philloleptus Cuatr.

corresponden a $. reicheanus Cabr. Una de

las supuestas diferencias entre estas dos

especies son los aquenios glabros en $. rei-

cheanus y pubescentes en S. phylloleptus.

Hemos examinado material típico de $.

reicheanus (Werdermann 1104, isotipo,

CONC) y los aquenios son pubescentes,

aunque los pelos están muy poco desarro-

llados debido a su estado inmaduro. El

resto de los caracteres concuerda perfecta-

mente con los de los materiales que hasta

ahora se han referido a S. phylloleptus.

La lista de las especies de Cardamine está

basada en el trabajo de B. Sjóstedt, Revi-

sion of the genus Cardamine L. (Crucife-

151

(8)

(10)

(11)

(12)

(13)

(14)

rae) in South and Central America. Bot.

Not. 128: 8-19. 1975, quien reduce drásti-

camente el número de especies. A pesar de

considerar este tratamiento no del todo

satisfactorio, lo hemos preferido al de

Schulz, Monographie der Gattung Carda-

mine. Bot. Jahrb. Syst. 32: 280-623, 4

láms. 1903, que considera un número ex-

cesivo de especies y taxa subespecíficos.

Khanna y Rollins (A taxonomic revision of

Cremolobus (Cruciferae). Contr. Gray

Herb. 195: 135-157. 1965) han demostra-

do la gran variabilidad morfológica de los

frutos de Cremolobus. Según esto, Urbano-

doxa tarapacana Ric. et Martic. es un sinó-

mimo de Cremolobus chilensis.

Varios nombres incluidos en Gentiana per-

tenecen a Gentianella, pero no pueden ser

combinados mientras no se haga una revi-

sión crítica de las especies chilenas.

Laurelia philippiana ha sido incluida en el

nuevo género Laureliopsis por Schodde

(Parodiana 2(2): 298-299. 1983).

La lista de géneros y especies de Nolana-

ceae está basada en la revisión de 1.M.

Johnston, A study of the Nolanaceae.

Proc. Amer. Acad. Arts 71(1): 1-97. 1936.

A. Mesa, en un estudio reciente (Nolana-

ceae. Fl. Neotropica Monogr. 26. 1981)

sinonimiza a Alona bajo Nolana y reduce

considerablemente el número de especies.

Lathyrus sericeus Colla es un nombre ilegíti-

mo por existir un homónimo anterior, L.

sericeus Lam. Lo hemos mantenido por ra-

zones prácticas y carecer de antecedentes

para un cambio de nombre.

La presencia de Condalia en Chile es du-

dosa.

Para las especies de Quinchamalium chile-

nas existen por lo menos 32 nombres dis-

ponibles, pero actualmente es imposible

saber el número de especies válidas.

Hemos aceptado a Glandularia como géne-

Gayana, Bot. 42 (1-2), 1985

(15)

(16)

(17)

ro diferente de Verbena. La lista de Glandu-

laria comprende todos los nombres combi-

nados hasta ahora; sin embargo, hay va-

rias especies que indudablemente perte-

necen a este género y que todavía perma-

necen en Verbena. Por eso hemos preferi-

do incluir en ambos géneros todos los

nombres disponibles, sean Glandularia o

Verbena.

Existe también Viola pusilla H. et A. (1833),

diferente de V. pusilla Poepp. (1829). No

sabemos si existe un nombre posterior dis-

ponible para la primera especie.

Hubiéramos preferido incluir todas las es-

pecies de Calamagrostis bajo Deyeuxia, pero

no existen las combinaciones necesarias.

La grafía correcta debería ser Monroa.

152

(18)

(19)

(Ver Farr, Leussink y Stafleu, Index No-

minum Genericorum (Plantarum) 1126.

1979).

Poa modesta Phil. es nombre ilegítimo por

existir un homónimo anterior, P. modesta

Tuckerm. No contamos con la informa-

ción necesaria para proponer otro

nombre.

El tipo del género Ortachne es O. retorta

Nees ex Steud. =Stipa rariflora (Hook. f.)

Benth. Considerando a esta especie como

perteneciente al género Stipa, no se puede

mantener el género Ortachne, por lo que es

necesaria la siguiente nueva combinación:

Stipa breviseta (Hitchc.) Marticorena et

Quezada, nov. comb.

Ortachne breviseta Hitchc., J. Wash. Acad.

Sci. 17(6): 141, fig. 2. 1927.

Referencias

bibliográficas

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Meikle, R.D. 1980. Draftindex of author abbrevia-

tions compiled at the Herbarium Royal Bota-

nic Gardens, Kew. Basildon. v, 249 pp.

Pritzel, G.A. 1871-77. Thesaurus literaturae bota-

nicae omnium gentium inde a rerum botanica-

rum initiis ad nostra usque tempora, quinde-

cim millia operum recensens. Editionem no-

vam reformatam. Leipzig. 576 pp.

Stafleu, F.A. 1967. Taxonomic literature. Utrecht,

Zug. xx, 556 pp.

155

Stafleu, F.A. y R.S. Cowan 1976. Taxonomic litera-

ture. A selective guide to botanical publications

and collections with dates, commentaries and

types. Second edition. Utrecht. Vol. 1: A-G. xl,

1136 pp. 1976; Vol. 2: H-Le. xviii, 991 pp.

1979; Vol. 3: Lh-O. xii, 980 pp. 1981; Vol. 4:

P-Sak. ix, 1214 pp. 1983.

Tutin, T.G., V.H. Heywood, N.A. Burges, D.M.

Moore, D.H. Valentine, S.M. Walters y D.A.

Webb (Editores) 1964-80. Flora Europaea.

Cambridge. 5 vols.

Flora vascular de Chile: C. MARTICORENA Y M. QUEZADA

Pág.

13

e!

22

26

31

35

37

38

39

82

86

87

89

91

92

136

ADDENDA ET CORRIGENDA

Reemplazar Cryptogramma fumarifolia por Cryptogramma cnispa (L.) R. Br. var.

chilensis (Christ) Looser

Reemplazar Plagiobothrys tinctorius por Plagiobothrys myosotoides (Lehm.) Brand

Eliminar Corryocactus brachypetalus y reemplazar Corryocactus krausu por Corryo-

cactus brevistylus (Schum.) Britton et Rose

Eliminar Arenaria microphylla (= Arenaria serpens)

Eliminar Chamomilla recutita (= Matricaria recutita)

En Matricaria, agregar * Matricaria recutita L.

Eliminar Senecio amphibolus var. amphibolus y var. socials (= Senecio dryophyllus)

Agregar Senecio dryophyllus Meyen et Walp.

Agregar Senecio nutans Sch. Bip. y Senecio rufescens DC.

Eliminar las variedades y formas de Cyperus eragrostas

Eliminar Deschampsia atropurpurea (= Vahlodea atropurpurea)

En Echinochloa, agregar * Echinochloa crus-pavonis (H.B.K.) Schult.

Eliminar Panicum pencanum (= Dichanthelium sabulorum)

En Setaria, agregar * Setaria Brachytricha (Steud.)

Mez ex Herrm.

Agregar Vahlodea y * Vahlodea atropurpurea (Wahlenb.)

Fries ex Hartman.

Agregar:

Hartm. Carl Johan Hartman (1790-1849)

157

y

JJ O

10.

11.

12.

13.

14.

15.

16.

17.

18.

19.

20

Bl.

REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

. La revista Gayana dedicada al distinguido naturalista francés Claudio Gay, es el órgano oficial de la

Editorial de la Universidad de Concepción, Chile, para la publicación de resultados de investigaciones

originales en el área de las Ciencias Naturales. Está compuesta de las series Botánica, Zoología y

Miscelánea.

Las dos primeras aparecen en la forma de un volumen anual compuesto por cuatro números; Gayana

Miscelánea es aperiódica.

. Gayana recibe trabajos realizados por académicos de la Universidad de Concepción y ocasionalmente

los de otros investigadores nacionales o extranjeros de prestigio, elaborados según las normas del

presente reglamento. La recepción es permanente.

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consultada previamente al Director.

. El manuscrito debe ser entregado en triplicado; una de las copias llevará las figuras originales.

. El Director de la revista, asesorado por el Comité de Publicación, se reserva el derecho de aceptar o

rechazar el manuscrito.

. El manuscrito será enviado a pares para su revisión técnica.

. La primera prueba de imprenta será enviada al autor principal para su corrección antes de la

impresión definitiva. Si ello fuere imposible o dificultoso la corrección será realizada por el Comité de

Publicación.

. Los nombres científicos y las locuciones latinas serán las únicas que irán subrayadas en el texto. La

primera vez que se cite un organismo deberá hacerse con su nombre científico completo (género,

especie y autor).

. Las medidas deberán ser expresadas en unidades del sistema métrico; si fuera necesario agregar

medidas en otros sistemas, las abreviaturas correspondientes deben ser definidas en el texto. Decima-

les con coma, no punto (Ejemplo: 0,5).

Las citas en el texto deben incluir nombre del autor y año [ Ejemplo: Smith, J.G. (1952)]. Si hay varios

trabajos de un autor en un mismo año, se citará con una letra en secuencia adosada al año (1952a).

Cuando hay más de dos autores todos los nombres serán citados en la primera mención [Ejemplo:

Smith, J.G., P.J. Jones and W.E. Williams (1981); las referencias posteriores serán: Smith et al. (1981)].

La bibliografía incluirá todas y sólo las referencias citadas en el texto, dispuestas por orden alfabético

del apellido del primer autor, sin número que la anteceda. La literatura botánica será citada según el

B-P-H (Botánico-Periodicum-Huntianum) y la zoológica según el Style Manual of Biological Journals.

La nomenclatura de los trabajos botánicos y zoológicos se regirá por sus respectivos códigos.

Las ilustraciones y tablas deben ser adecuadas para, una vez reducidas, ocupar un ancho de 70 mm

(una columna) o 150 mm (dos columnas) y una longitud no superior a 220 mm, incluido el espacio del

texto explicativo.

Los dibujos deben ser de alto contraste y deben llevar una escala para facilitar la determinación del

aumento.

Las figuras se numerarán en orden correlativo con números arábigos. Las tablas de igual modo con

números romanos. Cada tabla debe llevar un título descriptivo en la parte superior.

Las fotografías se considerarán figuras para su numeración. Serán en blanco y negro, brillantes, de

grano fino y buen contraste y deben ser acompañadas de una escala para la determinación del

aumento.

En el reverso de las láminas originales se deberá indicar el nombre del autor, título del trabajo y

número de las láminas.

Adjunto al manuscrito se entregarán en forma secuencial las explicaciones de cada una de las figuras.

El texto deberá contener: Título, título en inglés, nombre de los autores, dirección de los autores,

Resumen, Abstract, Key Words, Introducción, Materiales y Métodos, Resultados, Discusión y Conclu-

siones, Agradecimientos y Bibliografía.

El título debe ir todo escrito en letra mayúscula y expresar el contenido real del trabajo. Si incluye un

nombre genérico o específico se indicará el rango sistemático inmediatamente superior.

Si por alguna circunstancia especial el trabajo debe ser publicado en forma diferente a las disposicio-

nes anteriores, el autor deberá exponer su petición al Director antes de enviarlo.

CONTENIDO / CONTENTS

MARTICORENA, C. y M. QUEZADA. Catálogo de la flora vascular de Chile. :

Catalog of the vascular flora of Chile.

Deseamos establecer canje con Revistas similares.

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMITE DE PUBLICACION

CASILLA 2407 APARTADO 10

CONCEPCION. CHILE

EDITORIAL UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

5Ed Impreso en los Talleres de

6-3) EDITORIAL UNIVERSITARIA

ISSN 0016-5301

GAYANA

BOTANICA VOLUMEN 42 NUMEROS 3 - 4 1985

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS

Y DE RECURSOS NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA:

Alberto P. Larrain

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR:

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HAROLDO TORO

Universidad Católica, Valparaíso

ISSN 0016-5301

CIAWAUNA

BOTANICA VOLUMEN 42 NUMEROS 3-4 1985

CONTENIDO / CONTENTS

KALIN ARROYO, M.T. y C. MARTICORENA. Additions to the flora of

Chile: new records for the Altiplano .................... A a

Adiciones a la flora de Chile: nuevos hallazgos para el Altiplano.

RIVERA R., P. Las especies del género Nitzschia Hassall, sección

Pseudonitzschia (Bacillariophyceae), en las aguas marinas chilenas

Chilean marine species of the genus Nitzschia Hassal/l, section Pseu-

donitzschia (Bacillariophyceae).

KALIN ARROYO, M.T., C. MARTICORENA y O. DOLLENZ. New records

for the flora of Chile based on an expedition to the Sierra de los

Baguales, Ultima Esperanza, Patagonia ................ooooooo...

Nuevos hallazgos para la flora de Chile basados en una expedición a la

Sierra de los Baguales, Ultima Esperanza, Patagonia.

PARRA, OSCAR O. y CARLOS E. DE M. BICUDO. Groenbladía (Desmidia-

ceae): A first record of occurrence in Chile .......................

Groenbladia (Desmidiaceae): Primer registro para Chile.

RIVERA R., P. Nuevo registro de Thalassiosira weissflogií¡ (Grunow)

Fryxell and Hasle (Bacillariophyceae) para Chile ..................

A new record of Thalassiosira weissflogii (Grunow) Fryxell and Hasle

(Bacillariophyceae) from Chile.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

3

41

47

51

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse sino

luego que los sabios del país hagan un especial estudio de ellos”.

Claudio Gay, Hist. de Chile, 1:14 (1848).

Portada: Thalassiosira weissflogú Bahía de Concepción, Chile

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORIAL UNIVERSITARIA, S.A.

EN EL MES DE DICIEMBRE DE 1985,

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

PARA LA EDITORIAL DE LA UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Gayana, Bot. 42 (3-4), 3-7, 1985

ISSN 0016-5301

ADDITIONS TO THE FLORA OF CHILE:

NEW RECORDS FOR THE ALTIPLANO

ADICIONES A LA FLORA DE CHILE:

NUEVOS HALLAZGOS PARA EL ALTIPLANO

Mary T. Kalin Arroyo', Clodomiro Marticorena

ABSTRACT

Study of material collected between February-April, 1984

on Cerro Choquelimpie, Cerro Condoriri, the north-west

face of Cerro Guaneguane and in the upper reaches of

Quebrada Taapaca, all within or close to the northern

boundary of Parque Nacional Lauca on the Chilean

Altiplano, I Region (18%S, 69%W), and in the precordi-

llera to the west of the park between Cuesta de Cardones

and Putre has revealed 11 new records (including one

genus) for the Chilean flora. The previously uncited taxa

are: Distichia filamentosa (Buch.) Griseb., Draba

alchemilloides Gilg ex Gilg et Muschl., Helitropum

microstachyum R. et P., Lachemilla sandienss (Pilger)

Rothm., Leuchena daucifolia (D. Don) Crisci, Mastigostyla

gracilis R.C. Foster (generic record), Senecito haenkeanus

Cuatr., Solanum lycopersicoides Dunal, Tiquilia tacnensis

Richardson, Urtica flabellata H.B.K. and Viola granulosa

Wedd.

Zz

RESUMEN

El estudio de material colectado entre febrero y abril de

1984 en el Cerro Choquelimpie, Cerro Condoriri, las

laderas NO del Cerro Guaneguane y en la parte superior

de la Quebrada de Taapaca, todos ellos dentro o cerca del

límite norte del Parque Nacional Lauca en el Altiplano

chileno, I Región (1895, 69%W), y en la precordillera al

oeste del parque entre Cuesta de Cardones y Putre ha

proporcionado 11 nuevos hallazgos para la flora chilena.

Los taxa previamente no citados son: Distichia filamentosa

(Buch.) Griseb., Draba alchemilloides Gilg ex Gilg et

Muschl., Helvotropium microstachyum R. et P., Lachemilla

sandiensis (Pilger) Rothm., Leucheria daucifolia (D. Don)

Crisci, Mastagostyla gracilis R.C. Foster (género nuevo para

Chile), Senecio haenkeanus Cuatr., Solanum lycopersicoides

Dunal, Tiquilia tacnensis Richardson, Urtica flabellata

H.B.K. y Viola granulosa Wedd.

KEYWORDS: Flora, new records, Chilean Altiplano, Phytogeography.

INTRODUCTION

Over the past 15-20 years, numerous

botanical expeditions to the Altiplano and

preCordillera in the far north of Chile have

revealed the existence of a highly diverse

vascular flora with direct phytogeographic

connections to southern Perú, Bolivia and

northwestern Argentina (e.g. Ricardi éc

Marticorena, 1966; Marticorena 8: Quezada,

'Departamento de Biología, Facultad de Ciencias,

Universidad de Chile, Casilla 653, Santiago, Chile.

“Departamento de Botánica, Facultad de Ciencias y

Recursos Naturales, Universidad de Concepción, Casilla

2407, Concepción, Chile.

1974; Arroyo et al., 1982). Because of geo-

logical complexity and varied phy-

siography (Bórgel, 1983), not sur-

prisingly, many high mountains on the

Altiplano and in the preCordillera are yet

open to intensive exploration. In this region,

moreover, the irregularity of the summer

rains (2nvierno boliviano), especially along the

western desert edge (Veloso $e Arroyo, 1982)

is an additional complicating factor for the

study of the annual and geophyte flora. Over

the period February-April, 1984, an excep-

tionally wet year, a number of pre-

viously uncollected or poorly studied high

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

mountains, all within, or close to the northern

border of Parque Nacional Lauca, 1 Region

(1895, 69%W), (Cerro Choquelimpie, Cerro

Guaneguane, Cerro Condoriri, upper reaches

of Quebrada Taapaca on the north side of

Cerros de Ancoma) and the fairly well

collected sector of the preCordillera between

Cuesta de Cardones and Putre were explored

as part of investigations on the pollination

mechanisms of the Altiplano flora. As a result

of these studies and examination of material

deposited in CONC at earlier dates, 11 new

records, including that of one genus are

provided for the Chilean flora. Bibliographic

citations, relevant synonyms and short com-

mentaries are provided for each of these. Spe-

cimens have been deposited at Fcuc' and

CONC.

BORAGINACEAE

Heliotropium microstachyum R. et P., Fl. Pe-

ruv. Chil. 2: 3, tab. 110b. 1799; Johnston,

Contr. Gray Herb. 81: 12. 1928; Gangui, Re-

vista Fac. Ci. Exact. Fís. Nat. 17(2): 505, fig. 3

D-11955:

Heliotropium maicrostachyum, a prostrate annual

herb, preferring disturbed sites or sandy soils,

is widely distributed on the Altiplano of N.W.

Argentina, Bolivia and Perú; however, thus

far, where found in Chile, it is always scarce.

Coldenía phaenocarpa Phil., a synonym of H.

microstachyum was considered to occur in Chile

by Reiche (1907). However, as Johnston

(1928) indicates, Reiche (1907) was wrong in

considering the type locality of C. phaenocarpa

(Calcahuay, Potosí, Bolivia) in Chilean

territory. Interestingly, one of the localities of

H. microstachyum cited here (from Colchane) is

situated only 25 km to the NW of Calcahuay.

I RecioN: In disturbed vegetation, Quebrada

de Putre, 3300 m (18919'S, 69%35'W), 2. II.

1984, Arroyo 845844 (Fcuc); Parinacota, Be-

len, 3420 m (18%29'S, 69%31'W), 14. XI. 1974,

Castillo s.n. (CONC); Parque Nacional Isluga,

Colchane, 3720 m (19%16'S, 69%38'W),

21.111.1982, Villagrán 8 Arroyo 4146 (CONC).

lFcuc: unofficial code for collections housed at the

Facultad de Ciencias, U. de Chile, Santiago.

Tiquilia tacnensis Richardson, Sida 6: 238.

1976; Rhodora 79: 525. 1977.

Tiquilia tacnensis has been previously cited for

the Atacama Desert on the southern border of

Perú with Chile. Our material was collected on

the desert edge in the Cuesta de Cardones,

where the species grows in large procumbent

mats up to 60 cm across. Flowers are pale blue.

Tiquilia tacnensis is differentiated from closely

related T. atacamensis (Phil.) Richardson by its

non-appendaged corolla, and spheroidal

nutlets.

Il RecionN: Cuesta de Cardones, 1980 m

(18920'S, 69%52'"W), 25.1V.1984, Arroyo 84974

(Fcuc; CONC).

COMPOSITAE

Leucheria daucifolia (D. Don) Crisci, Darwi-

niana 20 (1-2): 52, fig. 10 D. 1976; Weddell,

Chloris And. 1: 34, tab. 10b. 1855 (as Chabraea

laciniata Wedd.).

Syn.: Ptilurus daucifolvtus D. Don, Trans. Linn.

Soc. London 16: 219. 1830.

The material cited has been assigned to

Leucheria daucifolia based on the degree of leaf

dissection, the large number of florets per

head and short rays. Future exploration of

other high peaks in the Chilean Altiplano will

possibly show that variation between L.

daucifolia and the closely related £L. pteropogon

(Griseb.) Cabr. of the II Region is clinal in

nature. Leucheria daucifolia grows close to the

upper limit of the vegetation, usually

protected in rock crevices. The heads are

dirty-white. Previously known only from Peru

and Bolivia.

I Recion: Quebrada de Tarapaca, north side

of Cerros de Ancoma, 4400 m (18%04'S,

69%29'W), 15.1V.1984, Arroyo 84845A (Fcuc;

CONC); east side of Cerro Choquelimpie,

4800 'm (18216'S, 69729'"W)7 29 1VH1984

Arroyo 84905 (Fcuc; CONC).

Senecio haenkeanus Cuatr., Fieldiana, Bot.

27(1): 44. 1950.

Syn.: Culcitium haenkei Wedd., Chloris And. 1:

139. 1856, non Senecio haenkei DC., 1837.

New records for the altiplano KaLiN ARROYO AND MARTICORENA

This species of Senecio belongs to Section Bra-

chypappus (Sch. Bip.) B. et H. It may be easily

distinguished from its close relative, $. zoellneri

Mart. et Quez. by its densely lanate leaves and

drooping, usually solitary capitula. Senecio

haenkeanus grows between 4500 - 5000 m close

to the upper limit of the vegetation usually in

association with Draba alchemilloiddes Gilg ex

Gilg et Muschl. and Leuchena daucifoha (D.

Don) Crisci. Our material represents a notable

southern range extension for the species, pre-

viously collected only in the high mountains of

central Peru (e.g. Macbride € Featherstone 830,

Casapalca, 15,500 ft).

I ReGion: north-west side of Cerro Guane-

guane, 4750 m (18%09'S, 69%17'W),

23.1V.1984, Arroyo 84938A (Fcuc); Cerro

Guaneguane, south side (1813'S, 69%17'W),

20.1V.1980, Arroyo, Villagrán 8 Armesto 2647

(CONC); Cerro Choquelimpie, 4520 m

(18%16'S, 69%29'W), 20.1V.1984, Arroyo 84902

(Fcuc; CONC).

CRUCIFERAE

Draba alchemilloides Gilg ex Gilg et Muschl.,

Bot. Jahrb. Syst. 42(5): 473. 1909; O.E.

Schulz, Pflanzenr. 89: 243. 1927; Macbride,

Field Mus. Nat. Hist., Bot. Ser. 13 (2, 3): 955.

1938.

Draba alchemilloides was found at 4500 m, close

to the upper limit of the vegetation on Cerro

Condoriri, close to Lago Chungará. This tiny,

yellow-flowered species forms small rosettes

which grow in humid spots, protected by

rocks. It is typically accompanied by Silene

mandona (Rohrb.) Bocg. and Valeriana nivalis

Wedd. Previously reported for Perú.

I Recion: north side of Cerro Condoriri,

vicinity of Lago Chungará, 4500 m (18%14'S,

6913'"W), 10.111.1984, Arroyo 84738 (Fcuc).

IRIDACEAE

Mastigostyla Johnst.; Contr. Gray Herb. 81:

85. 1928; R.C. Foster, Rhodora 64: 292. 1962.

Typus: Mastigostyla cyrtophylla Johnst.

The genus Mastigostyla, with some 17 species,

has been reported previously from Perú

(Apurimac, Arequipa, Ayacucho, Cuzco),

Bolivia (Cochabamba, La Paz, Potosí) and

Argentina (Catamarca, Jujuy, La Rioja, Sal-

ta, Tucumán). (Foster, 1945; 1962). In

Mastigostyla the outer tepals are much larger

than the inner ones, the stigmatic areas are

transverse and the bifid stigmas are extended

as flagelliform prolongations.

Mastigotyla gracilis R.C. Foster, Rhodora 64:

296. 1962.

This beautiful geophyte with large blue-violet

tepals, the outer of which are streaked white

towards the base, has probably escaped

attention on the Chilean Altiplano until now

because it only appears in exceptionally wet

years. Mastigostyla gracilis was abundant in the

preCordillera between Zapahuira (3200 m)

and Putre (3500 m) in 1984. In contrast, in

1979, a very dry year, this species was not seen.

I ReGjon: hills: close to Putre, 3500 m

(1810'S, 69%37'W), 13.1V.1984, Arroyo 84829

(Fcuc; CONC); between Putre and entrance to

Socoroma, 3400m (18%17'S, 69%35'W),

1.111.1984, Arroyo 84629 (Fcuc; CONC).

JUNCACEAE

Distichia filamentosa (Buch.) Griseb., Abh.

Konigl. Ges. Wiss. Góttingen 24: 318. 1879;

Buchenau, Pflanzenr. 25: 34. 1906; Barros,

Darwiniana 10: 291. 1953.

Syn: Agapatea filamentoa Buch, Abh.

Naturwiss. Vereine Bremen 6: 124. 1875.

The common species of Distichia on the

Chilean Altiplano is D. muscoides Nees et

Meyen. —Distichha filamentosa is easily

distinguished from the latter by its smaller

leaves which are long-ciliate. Additionally, the

leaves of D. filamentosa are less coriaceous than

those of D. muscoides, and the cushions are less

dense. The new species of Distichía for Chile

was found in a high andean bog (bofedal) at

4700 m, well above the average altitudinal

range of D. muscoides. This species has been

reported previously for the Altiplano of

Bolivia and NW Argentina.

I Recion: Cerro Guaneguane, 4700 m

(1809"S, (69*17"W),:23.IV:1984, ¡Arroyo

84956-A (Fcuc; CONC).

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

ROSACEAE

Lachemilla sandiensis (Pilger) Rothm., Re-

pert. Spec. Nov. Regni Veg. 42: 172. 1937.

Syn.: Alchemilla sandiensis Pilger, Bot. Jahrb,

Syst. 37: 1906; Perry, Contr. Gray Herb. 84:

43. 1929; Macbride, Field Mus. Nat. Hist.,

BotriSermiS(203): 11150. 1938:

The two species of Lachemilla know from Chile

to date, L. pinnata (R. et P.) Rothm. and £.

diplophylla (Diels) Rothm., are both common

on he northern part of the chilean Altiplano.

Like these, L. sandiensis is restricted to high

andean bogs (bofedales), but at a higher

altitude. Lachemilla sandiensis is characterized

by glabrous, palmate leaves. Prior reports of

this species are from Perú (Puno).

I Recion: Cerro Guaneguane, north-west

side, 4700 m, in high andean bog (bofedal)

(18%09'S, 6917'W), 23.1V.1984, Arroyo 84954

(Fcuc; CONO).

SOLANACEAE

Solanum lycopersicoides Dunal in DC.,

Prodr. 13(1): 38. 1852; Bitter, Repert. Spec.

Nov. Regni Veg. 11: 466. 1912; Correll, The

Potato and its Wild Relatives, p. 112, fig. 32

1962.

This large shrub with yellow flowers, origina-

lly described from Peruvian material, is relati-

vely common in the Putre area where its grows

along roadsides and in disturbed habitats. It

supperficially resembles Lycopersicon chilense

Dunal in the field. Solanum lycopersicordes along

with S. sitiens Johnst. are the only yellow-

flowered species of the genus in Chile.

I ReGioN: near Putre, 3500 m (18%11'S,

69%33'W), 11.1V.1984, Arroyo 84827A (Fcuc;

CONC); 13.111.85, Landero, Squeo € Mernez

01185 (CONC); 16.111.1985, Landero et al.,

06285 (CONC); Quebrada de Putre, 3600 m

(18914'S, 69%31'"W), 17.1V.1979, Armesto, Arroyo,

Uslar 8c Villagrán 1150 (CONC).

URTICACEAE

Urtica flabellata H.B.K., Nov. Gen. Sp. Pl. 2:

40. 1817; Sorarú, Darwiniana 17: 269, pl. 2.

1972.

A prostrate annual weedy species with light

green foliage, Urtica flabellata was collected at

the edge of a high andean bog (bofedal),

heavily grazed by llama. It has been reported

previously for Colombia, Perú, Ecuador,

Bolivia and Argentina.

I Recion: road between Putre and Las

Cuevas, ca. 6 km west of Las Cuevas, 4050 m

(18%09'S, 69%29'"W), 17.1V.1984, Arroyo 84885

(Fcuc; CONC).

VIOLACEAE

Viola granulosa Wedd., Ann. Sci. Nat. Bot.,

ser. 5, 1: 292. 1864; Chloris :Añd:, plaS458

1857-61; Baehni et Weibel, Candollea 8: 213.

1941; in Macbride, Field Mus. Nat. Hist., Bot.

Ser. 13(4, 1): 74. 1941.

This small perennial rosette species of Viola

with rugose leaves, crenately lobed, is an

extremely rare plant on the Chilean Altiplano.

It is restricted to volcanic sands, where it is

usually camouflaged. The closest relative of V.

granulosa in Chile is probably V. llullaillacoensis

Becker, known only from Volcán Llullaillaco,

111 Región.

I Recion: road from Parinacota to Lago

Chungará, 4500m (18%15'S, 69%13'W),

29.111. 1961, Ricardi, Marticorena 8 Matthet

320 (CONO); close to Parinacota on volcanic

sand, 4500 m (182168: 69%15'W),

17.1V.1984, Arroyo 84892 (Fcuc); Portezuelo

de Chapiquiña, 4000 m (18912'S, 69%28'W),

27.111.1961, Ricardi, Marticorena 8e Matthei 240

(CONC).

AKNOWLEDGEMENTS

This research was completed while the first

author held a John Simon Guggenheim

Memorial Fellowship. Field work was

financed by Project N* 1755-8425, Dirección

General Académica, Departamento de

Desarrollo de la Investigación, Universidad

de Chile, Santiago, and Project N* 1047,

Fondo Nacional de Investigación, CONICYT,

Chile. The constant support of Sr. H. Torres,

Director, CONAF, I Región, Arica is

gratefully acknowledged.

New records for the altiplano KaLin ARROYO AND MARTICORENA:

LITERATURE CITED

ARROYO, M. T. KaLin, VILLAGRÁN, C., MARTICO-

RENA, C. y ARMESTO, J. 1982. Flora y relaciones

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(Arica, lat. 1828'S). 1: 5-12. ROSTLAC, Monte-

video.

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Gayana Bot. 42 (3-4); 9-38, 1985

ISSN 0016-5301

LAS ESPECIES DEL GENERO NITZSCHIA HASSALL, SECCION

PSEUDONITZSCHIA (BACILLARIOPHYCEAE),

EN LAS AGUAS MARINAS CHILENAS*

CHILEAN MARINE SPECIES OF THE

GENUS NITZSCHIA HASSALL, SECTION

PSEUDONITZSCHIA (BACILLARIOPHYCEAE)

P. Rivera R.**

RESUMEN

La gran variabilidad de las características morfológicas de

los representantes del género Nitzschia, puesta nuevamen-

te en evidencia en los úlumos años por varios trabajos

realizados con técnicas modernas de microscopia, nos in-

dujo a realizar un estudio de los taxa de la Sección Pseudo-

nitzschia que se distribuyen en el Pacífico Sudoriental

entre los 18%S y los 56%S. Ciento quince muestras de fito-

plancton, pertenecientes a la colección Diatomológica del

Departamento de Botánica de la Universidad de Concep-

ción, Chile, fueron estudiadas mediante técnicas de mi-

croscopia fotónica y electrónica de transmisión y de barri-

do. A nuestra disposición estuvo la mayoría del material

chileno analizado por otros autores en sus investigaciones

sobre las diatomeas del Pacífico Sudoriental. Para la deter-

minación de las especies fue de gran importancia el estu-

dio del material depositado en varios herbarios europeos

y americanos.

El análisis demostró la presencia de los siguientes ocho

taxa: N. pungens Grunow, N. seriata Cleve, N. fraudulenta

Cleve, N. subpacifica Hasle, N. delicatissima Hasle, N. pseu-

dodelicatissima Hasle, N. cuspidata Hasle y N. inflatula Has-

le. Los dos últimos se señalan por primera vez para el área

en estudio.

El estudio pone también en evidencia que la variación

morfológica de las especies es mucho mayor de lo que se

conocía hasta la fecha. Por ello, la separación de la Sección

Pseudonitzschia en dos complejos (N. seriata y N. delica-

tissima), sobre la base del ancho de las valvas, no es ade-

cuada. Este estudio demuestra también que N. pseudoseria-

ta Hasle y N. seriata f. obtusa Hasle son sinónimos de N.

seriata Cleve, especie que presenta grandes variaciones de

sus características observables mediante microscopia fotó-

nica, como también mediante microscopia electrónica.

*Proyecto 2.032.07, financiado por la Dirección de

Investigación de la Universidad de Concepción, Chile.

**Departamento de Botánica, Universidad de Con-

cepción, Casilla 2407, Apartado 10, Concepción, Chile.

La observación del material en preparaciones acuosas

no permite reconocer suficientes características morfoló-

gicas para definir a las especies. Por lo tanto, las muestras

deben ser montadas en resinas con alto índice de refrac-

ción. Sin embargo, N. cuspidata y N. delicatissima pueden

ser determinadas con seguridad únicamente mediante

características visibles a través de la microscopía electró-

nica.

ABSTRACT

This revision of the south-eastern Pacific genus Nitzschia

Section Pseudonitzschia was suggested by the great

morphologic variability observed when modern

microscopic techniques are applied to the group. One

hundred fifteen phytoplankton samples from the

Diatomological Collection, Department of Botany,

University of Concepcion were studied through light and

scanning electron microscopy. Most of the south-eastern

Pacific Chilean material studied by previous authors was

available. European and North-american Herbaria

specimens were instrumental in the identification of

species.

The following taxa were recorded: N. fpungens

Grunow, N. seriata Cleve, N. fraudulenta Cleve, N.

subpacifica Hasle, N. delicatissima Hasle, N.

pseudodelicatissima Hasle, N. cuspidata Hasle and N.

inflatula Hasle. The two last species are new records for

the area.

Morphologic variability is much higher than what has

been shown to date. Hence, splitting of the Section into

two complexes (N. seriata and N. delicatissima) on the

basis of valve width is inconvenient. Itis also shown that N.

pseudoseriata Hasle and N. seriata f. obtusa Hasle are

synonyms of N. seriata Cleve, a highly variable taxon when

studied under light and scanning electron microscopy.

Morphologic characters in water-mounted specimens

are not clear enough for specific identification. High

refraction index resin-mounted specimens must be used.

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

Specific characters of two species, N. cuspidata and N.

delicatissima can only be recognized through SEM.

KEYWORDS: Diatoms, Bacillariophyceae, Morphology, Taxono-

my, Nitzschia, Chile.

INTRODUCCION

El género Nitzschia Hassall presenta una am-

plia distribución en las aguas dulces, salobres y

marinas. Se caracteriza por sus células gene-

ralmente solitarias, a veces unidas en filamen-

tos por sobreposición de sus extremos o me-

diante sustancias mucilagenosas. Las valvas

son lineares a lanceoladas. La rafe es usual-

mente marginal y bien desarrollada, encerra-

da por un canal provisto de fíbulas e interes-

pacios. Numerosas costillas transapicales se

disponen sobre las valvas y entre ellas se sitúa

un número variable de líneas de delicados po-

roides.

No sólo es uno de los géneros con mayor

número de especies de las Bacillariophyceae

(según el Catálogo de Vanlandingham, 1978,

hay cerca de 1.054 taxa), sino que, también,

uno de los más difíciles, por el escaso número

de caracteres a usar.

El género se subdivide en más de 20 seccio-

nes sobre la base de características presentes

en las valvas (forma de ellas, posición de la

rafe, etc.). Aunque solamente algunas de estas

secciones han sido reestudiadas mediante téc-

nicas modernas (Sección Pseudonitzschia,

Hasle 1965; Sección Lanceolatae, Lange-

Bertalot 1977; Lange-Bertalot y Simonsen

1978), ha quedado claramente demostrada la

gran variabilidad de los caracteres morfológi-

cos visibles mediante microscopia fotónica.

En 1958 Hustedt considera al género Pseu-

donttzschía Peragallo et Peragallo (1900) como

una sección de Nitzschia, criterio que fue segui-

do por Hasle (1965) al hacer la revisión de este

grupo. Según Hasle (op. cit.) la sección Pseu-

donitzschia se caracteriza por estar constituida

únicamente por especies planctónicas mari-

nas, las células se unen en cadena por sobrepo-

sición de sus extremos valvares, las valvas son

lineares a lanceoladas (tanto en vista conecti-

val como en vista valvar), la rafe es muy excén-

trica y las costillas transapicales, entre las cua-

les se sitúan líneas de poroides, son muy noto-

rias.

La Sección Pseudonitzschia comprende

aproximadamente 18 taxa que Hasle (1965),

10

sobre la base de la longitud del eje transapical,

subdivide en dos grupos: el complejo Nitzs-

chia seriata y el complejo Nitzschia delicatissi-

ma, afirmando que ésta es una característica

fácil de usar en los análisis rutinarios de mues-

tras planctónicas.

Siete especies de esta sección han sido seña-

ladas por diversos autores para la costa chi-

lena:

— complejo N. seriata:

N. senata

N. pseudoseriata

N. pungens

N. subpacifica

N. fraudulenta

— complejo N. delicatissima:

N. delicatissima

N. pseudodelicatissima

De ellas, N. serrata destaca por su abundan-

cia y periodicidad, siendo un componente ha-

bitual del fitoplancton marino de Chile. Sin

embargo, Grethe Hasle indica en sus trabajos

de 1965, 1972 y 1976, que esta especie se dis-

tribuye sólo en el Hemisferio Norte, y que la

especie presente en el Hemisferio Sur es N.

pseudoseriata. De esta forma, las actuales citas

de N. seriata para Chile se deberían a confu-

sión con N. pseudoseriata, o con otras especies

de la misma sección.

El trabajo de Hasle (1965) es la única revi-

sión morfotaxonómica existente sobre la Sec-

ción Pseudonitzschia y ha servido de base para

publicaciones relacionadas con la distribución

mundial de las especies (Hasle 1972, 1976). En

estudios florísticos más recientes (donde se

toca superficialmente a los taxa de esta sec-

ción), se ha seguido el criterio de Hasle en lo

que se relaciona con la distribución de la N.

seriata y de la N. pseudoseriata (Simonsen,

1974). Las diferencias entre ambos taxa fue-

ron, sin embargo, cuestionadas por Fenner et

al. (1976), aunque no demostradas. Por otro

lado, el análisis de la Sección Pseudonitzschia

realizado por Takano y Kuroki (1977) con

material recolectado en las aguas costeras de

Japón, dejó en evidencia la gran variabilidad

de algunos taxa de este grupo.

Con el objetivo de conocer los taxa de diato-

meas que realmente se distribuyen en las

aguas chilenas, iniciamos hace algunos años la

revisión de diversos géneros y especies de este

grupo (Rivera, 1981; Rivera y Koch, 1984;

Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

Koch y Rivera, 1984; Andrews y Rivera, en

preparación; etc.).

Entregamos ahora un análisis detallado del

género Nitzschia, sección Pseudonitzschia, im-

tegrado por algunas especies que son masivas

en el fitoplancton chileno. Pretendemos así

dar mayores antecedentes sobre la ya conoci-

da variabilidad de los caracteres taxonómicos

del género, dilucidando a la vez la aparente-

mente errónea citación que de sus especies se

ha hecho en el área de estudio.

MATERIALES Y METODOS

Se estudiaron 115 muestras de fitoplancton

recolectadas en el Pacífico Sudoriental entre

los 18%S y los 56%S, pertenecientes a la colec-

ción diatomológica del Departamento de Bo-

tánica de la Universidad de Concepción

(DIAT-CONC). En general, el área estudiada

y los materiales y métodos empleados se co-

rresponden con aquellos señalados por Rivera

(1981). El microscopio electrónico de barrido

utilizado es un Etec Autoscan y el de transmi-

sión un Philips EM-200 pertenecientes al La-

boratorio de Microscopia Electrónica de la

Universidad de Concepción.

A nuestra disposición estuvo la mayoría del

material chileno analizado por otros autores

en sus investigaciones sobre las diatomeas del

Pacífico Sudoriental (Avaria 1965, 1971, 1975

y 1976; Montecino y Lopehandia 1972; Rivera

1969; Rivera y Valdebenito 1979; Rivera y

González 1984; Balech 1962; Krasske 1941 y

Hendey 1937). Para la determinación de las

especies fue de gran importancia el estudio

del material depositado en los siguientes her-

barios europeos y americanos (abreviados se-

gún el Index Herbariorum):

— Kassel, Naturkunde - Museum der Stadt

Kassel, Kassel, Alemania Federal.

— BM, British Museum (Natural History),

London, England.

— BRM, Friedrich - Hustedt - Arbeitsplatz fúr

Diatomeenkunde, Institut fúr Meeres-

forschung, Bremerhaven, Alemania Fe-

deral.

— Colección privada del Dr. E. Balech, Ar-

gentina.

RESULTADOS

El análisis demostró la presencia de los si-

guientes ocho taxa de la Sección Pseudonitzs-

chia: Nitzschia pungens Grunow, Ñ. seriata Cle-

ve, N. fraudulenta Cleve, N. subpacifica Hasle,

N. cuspidata Hasle, N. delicatissima Cleve, N.

inflatula Hasle y N. pseudodelicatissima Hasle.

Nitzschia cuspidata y N. inflatula se señalan por

primera vez para el área en estudio.

Clave para las especies (sobre la base de observaciones en el microscopio fotónico)

Nodulo central ausente... iiiaciontóo des

bhiNédulo central presente... ocios o

2a Valvas lineares a linear-lanceoladas con extremos agudos, eje transapical 4-6,5 um.

Maa ao a, a a ao 0. e. 5...) .. ..0 1... 0.0 01. «te. .

E E it: N. pungens (p. 12)

2b Valvas lanceoladas a linear-lanceoladas con extremos redondeados, eje transapical

ES E ds ES TARA A A N. seriata (p. 13)

3a Fibulae y costillas transapicales en igual número, las últimas fácilmente visibles si se

báliza técnicas adecuadas de Microscopia:.... 2D cas N. fraudulenta (p. 15)

3b Costillas transapicales más numerosas que las fibulae, difícilmente contables o simple-

Mente no visibles en las preparaciones... . ...: a ae 4

4a Valvas con un lado fuertemente convexo, el otro más o menos derecho. Eje apical no

OTE EN: AE A A N. subpacifica (p. 16)

abBorma valvar diferente. Eje apicalimayor, 34 pm AO A 5

5a Valvas lineares o sublineares, a veces ensanchadas en su parte media ............. 6

valvas típicamente linear-lanceoladas.......-. =>: A N. cuspidata* (p. 17)

SAT AA RARA EA 1 LIA N. delicatissima* (p. 18)

Ba Valvas ensanchadas en. su parte: media. ....... ¿Le O ie N. inflatula (p. 18)

6b Valvas no ensanchadas en su parte media ................... N. pseudodelicatissima (p. 19)

*Diferenciación posible solamente mediante microscopia electrónica.

11

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

Nitzscma pungens Grunow

Figs. 1-13

Hasle, G.R., p. 12, Lám. 1, figs. 4-5; Lám. 5,

figs. 7-9; Lám. 6, fig. 3; Lám. 7, figs. 1-8 (1965)

- Takano, H. £ K. Kuroki, p. 42, figs. 1, 4-8

(1977). Takano, H., sheet 74 (1981).

Localidad tipo: Bahía Yeddo, Japón.

MATERIAL ESTUDIADO:

18220'S - 70%35'W,

187211632 W;

23728'S/- 70:31'W,

2IADS 107330 WI,

2349'S - 70%48'W, 24.

16.

ne)

24.

245:

8.1972, DIAT-CONC M - 761

8.1972, DIAT-CONC M - 776

9.1963, DIAT-CONC M - 172

8.1972, DIAT-CONC M - 1074

8.1972, DIAT-CONC M - 1071

23%49'S - 70%53'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1070

23%50'S - 70%42'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1072

29%56'S - 71%54'W, 22. 2.1960, DIAT-CONC M - 716

33%02'S - 719%37'W, 10. 3.1964, Avaria 1965, DIAT-

CONC M - 119; 3.2.1966, DIAT -

CONC M - 1118; 10.10.1971, DIAT-

CONC M - 859; 14.10.1964, Avaria

1971, DIAT-CONC M - 857; 11.3.1975,

Avaria 1976, DIAT-CONC M - 855

33927'S - 71%53'W, 8. 9.1972, DIAT-CONC M - 1075

33934'S - 71937'"W, 22.11.1967, DIAT-CONC M - 842;

16.1.1968, DIAT-CONC M - 1036;

13.11.1968, DIAT-CONC M - 840, Mon-

tecino y Lopehandia 1972.

35%36'S - 72%44'W, 18. 5.1931, St. WS. 593, Hendey

1937, DIAT-CONC 2348/2349

3632'S - 72257'W, 12. 9.1976, Rivera y González 1984,

DIAT-CONC M - 560

3637'S - 72%57'W, 31.10.1965, Rivera 1969, DIAT-

CONC - 1049; 6.2.1966, DIAT-CONC

M - 868; 6.2.1967, DIAT-CONC M -

1445; 15.10.1970, Rivera y González

1984, DIAT-CONC M - 207

36%40'S - 73908"W, 77.11.1965, DIAT-CONC M - 1050;

20.11.1965, DIAT-CONC M - 1053;

17.5.1966, DIAT-CONC M - 1065, Rive-

ra 1969

36%43'S - 73%07'W, Rivera 1969, 25.4.1965, DIAT-CONC

M - 1040; 17.10.1968, DIAT-CONC M -

865; 29.10.1965, DIAT-CONC M -

1048; 4.12.1965, DIAT-CONC M - 871;

11.12.1965, DIAT-CONC M - 1055;

26.12.1965, DIAT-CONC M - 1056

36744'S - 73%01'W, Rivera 1969, 17.4.1965, DIAT-CONC

M - 1039; 21.11.1965, DIAT-CONC M -

597

37%10'S - 73911'W, 11. 4.1977, Rivera y Valdebenito

1979, DIAT-CONC M - 664

38%00'S - 73%50'W, 22.11.1978, DIAT-CONC M - 1356

39%26'S - 73%10'W, Febrero 1975, DIAT-CONC M - 1291

41%48'S - 73%05'W, 24.11.1976, DIAT-CONC M - 1258;

29.4.1977, DIAT-CONC M - 1260;

10.9.1977, DIAT-CONC M - 1266

12

4304'S - 7334'W, Enero 1978, DIAT-CONC M - 1122

43%09'S - 7344'W, 10. 4.1978, DIAT-CONC M - 1219

45%52'S - 75%40'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M - 1361

47%47'S - 7454'W, 1.10.1972, DIAT-CONC M - 624

49 9'S - 74”28'"W, 5.10.1972, DIAT-CONC M - 629

4952'S - 74%23'W, 17.11.1978, DIAT-CONC M - 1389

N. pungens f. multiseries Hasle, Havtrekk Nakholmen,

6.3.1968, Ufiksert; W7, 72b Bremerhaven.

N. pungiformis Hasle, Isotypus, W7, 65b, Bremerhaven,

IOE N* 128, 30.Dec.1964, 5%16'N - 50%15'E.

Las células son fuertemente silificadas, li-

neares a linear-lanceoladas tanto en vista val-

var como en vista conectival, unidas en fila-

mentos por sobreposición de los extremos que

son muy agudos. Eje apical 87-174 um, transa-

pical 4-6,5 um. La rafe es marginal y las fíbulas

y las costillas transapicales son perfectamente

visibles en el microscopio fotónico, ambas se

presentan aproximadamente en igual núme-

ro. Fíbulas 9-15 en 10 um; costillas transapica-

les 9-17-en 10 pm, generalmente 12-14 en 10

um. Nódulo central ausente. La membrana

intercostal está perforada por 2-3 líneas de

poroides; poroides 3-4 en 1 jm.

La especie es fácilmente reconocible en el

microscopio fotónico por su alto grado de sili-

ficación y gran tamaño, por la forma de la

valva y la ausencia de nódulo central (Figs.

2-3).

La sobreposición de los extremos valvares

de dos células adyacentes puede ser mayor

que un tercio de su largo total (Fig. 1). Aunque

la especie presenta generalmente la membra-

na intercostal perforada por 2 líneas de poroi-

des (Figs. 4-8, 10-12), una tercera línea puede

estar presente cuando hay mayor separación

entre ellas (Figs. 9, 13), concordando con lo

observado por Takano y Kuroki (1977) en el

material de Japón.

Según Hasle (loc. cit) N. pungens f. multiseries

Hasle difiere de la forma típica principalmen-

te por la presencia de 2-4, generalmente 3-4

líneas de poroides (4-6 en 1 jm) en la mem-

brana intercostal.

Distribución en Chile: N. pungens había sido

señalada para el litoral chileno entre los 18? y

los 37910'S (Rivera, 1983). Los resultados del

presente estudio permiten extender el límite

sur de su distribución hasta los 49%52'S.

Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

Nitazschaa serrata Cleve

Figs. 14-38

Cleve, P.T., p. 478, Lám. 38, fig. 75 (1883) -

Hasle, G.R., p. 8, Lám. 1, fig. 1; Lám. 3, figs.

1-7; Lám. 4, figs. 1-2; Lám. 6, fig. 2 (1965).

Sinonimia: Nitzscha seriata f. obtusa Hasle, p.

10, Lám. 3, figs. 8, 9, 11; Lám. 4, figs. 5-7

(1965).

Nitzschia pseudoseriata Hasle, p. 11, Lám. 4,

figs. 3-4; Lám. 5, figs. 1-6; Lám. 6, fig. ]

(1965).

Localidad tipo: Tindingen, Grecia.

MATERIAL ESTUDIADO:

1821'S - 7632'W, 19. 8.1972, DIAT-CONC M -

2328'S - 70%31'"W, 24. 9.1963, DIAT-CONC M -

29%53'S - 71*19'W, 20.10.1983, DIAT-CONC M -

33%02'S - 71%37'W, 3. 2.1966, DIAT-CONC M - 1118;

23.9.1977, DIAT-CONC M - 1120;

10.12.1963, DIAT-CONC M - 853 y

10.3.1964, DIAT-CONC M - 1119, Ava-

ria 1965; 14.10.1964, DIAT-CONC M -

857, Avaria 1971; 11.3.1975, DIAT-

CONC M - 855, Avaria 1976

33%27'S - 71%53'"W, 8. 9.1972, DIAT-CONC M - 1075

3334'S - 71737'W, Montecino y Lopehandia 1972,

22.11.1967, DIAT-CONC M - 842;

16.1.1968, DIAT-CONC M - 1036;

16.9.1968, DIAT-CONC M - 1037;

13.11.1968, DIAT-CONC M - 840

3533'S - 72%42'W, 5. 3.1960, DIAT-CONC M - 730

3632'S - 72%57'"W, Rivera y González 1984, 12.9.1975

DIAT-CONC M - 561; 10.11.1975,

DIAT-CONC M - 575; 12.9.1976.

DIAT-CONC M - 560

72%57'"W, 6. 2.1966, Rivera 1969, DIAT-

CONC M - 868; 6.2.1967, DIAT-CONC

M - 1445

36740'S - 7308'"W, Rivera 1969,7.11.1965, DIAT-CONC

M - 1050; 20.11.1965, DIAT-CONC M -

1053; 4.2.1966, DIAT-CONC M - 875;

17.5.1966, DIAT-CONC M - 1065

36743'S - 7307'W, Rivera 1969, 25.4.1965, DIAT-CONC

M - 1040; 13.5.1965, DIAT-CONC M -

598; 22.8.1965, DIAT-CONC M - 1052;

29.10.1965, DIAT-CONC M - 1048;

4.12.1965, DIAT-CONC M - 871;

11.12.1965, DIAT-CONC M - 1055;

26.12.1965, DIAT-CONC M - 1056;

14.1.1966, DIAT-CONC M - 1058;

25.2.1966, DIAT-CONC M - 863;

17.10.1968, DIAT-CONC M - 865

36744'S - 7301'W, Rivera 1969, 3.4.1965, DIAT-CONC

M - 1038; 17.4.1965, DIAT-CONC M -

1039; 21.11.1965, DIAT-CONC M - 597

37*10'S - 73?11'W, 11.4.1977, Rivera y Valdebenito 1979,

DIAT-CONC M - 664

3926'S - 7310'"W, Febrero 1975, DIAT-CONC M - 1291

776

172

1577

3637'S -

13

41%46'S - 73%05'W, Krasske 1941, 7.11.1937,

4134/4135, DIAT-CONC M -., 1449;

18.11.1937, Kassel N” 4137/4138,

DIAT-CONC M - 1453

73%05'W, 24.11.1976, DIAT-CONC M -

10.9.1977, DIAT-CONC M -

7334'W, Enero 1978, DIAT-CONC

7528'W, 16.11.1978, DIAT-CONC

75%40'W, 16.11.1978, DIAT-CONC

74%54'W, 1.10.1972, DIAT-CONC

4748'S - 74%47'W, 1.10.1972, DIAT-CONC M - 625

4908'S - 74%22'W, 5.10.1972, DIAT-CONC M - 628

4909'S - 74%23'W, 5.10.1972, DIAT-CONC M - 629

49724'S - 7425'W, 6.10.1972, DIAT-CONC M - 630

4952'S - 74%23'W, 17.11.1978, DIAT-CONC M - 1389

5022'S - 75%19'W, 18.11.1978, DIAT-CONC M - 1391

50%33'S - 74%53'"W, 7.10.1972, DIAT-CONC M - 1107

51912'S - 74%05'W, 10.10.1972, DIAT-CONC M - 634

51951'S - 73%43'W, 29. 9.1972, DIAT-CONC M - 612

52%52'S - 72%57'W, 23. 9.1972, DIAT-CONC M - 595

52%58'S - 71%28'W, 17. 9.1972, DIAT-CONC M - 927

5306'S - 73%26'W, 24. 9.1972, DIAT-CONC M - 608

53%07'S - 73%08'W, 22. 9.1972, DIAT-CONC M - 978

53%08'S - 72%58'W, 23. 9.1972, DIAT-CONC M - 989

5309'S - 73%03'W, 24. 9.1972, DIAT-CONC M - 956

5313'S - 73%14'W, 30.10.1975, DIAT-CONC M - 1157;

16.12.1975, DIAT-CONC M - 907;

17.12.1975, DIAT-CONC M - 1147

53%15'S - 72%44'W, 23. 9.1972, DIAT-CONC M - 1020

5350'S - 71%45'W, 29.10.1975, DIAT-CONC M - 891;

15.12.1975, DIAT-CONC M - 895;

16.12.1975, DIAT-CONC M - 1185

53%52'S - 72%57'W, 23. 9.1972, DIAT-CONC M - 963

53%54'S - 70%14'W, 15. 9.1972, DIAT-CONC M - 605

5401'S - 71%45'W, 30.10.1975, DIAT-CONC M - 899;

17.12.1975, DIAT-CONC M - 897

56719'S - 67%09'W, 16. 4.1930, Hendey 1937, St. 388,

DIAT-CONC 2350/2351

Kassel N”

41%48'S - 1258,

1266

M -

4304'S -

brete S -

5"52'S -

a -

1122

1360

M - 1361

M - 624

Nitzscha pseudoseriata Hasle, 20 April 1967, Cape Town

N* 11, 30%45'S - 17%53,6'E, G.R.H., especimen en círculo,

W7, 84b, Bremerhaven.

Nitascha seriata f. obtusa Hasle, Isotipo, 30 April 1962,

Hjellnes, Porsanges, 7030,7'N - 25%35'E, G.R.H., W?7.

87b, Bremerhaven.

Nitzscha seriata Cl. y N. fraudulenta Cl., Norwegian Sea, 11

juni 1959, 6320'N - 2200'"W, G.R.H., W?7, 96b, Bremer-

haven.

Es una de las especies más comunes a lo

largo de la costa chilena y se presenta forman-

do largos filamentos de células unidas por so-

breposición de sus extremos, la cual alcanza de

1/3 a 1/4 del largo total de las células (Figs.

15-16). Los frústulos son siempre muy silifica-

dos y las fíbulas y las costillas transapicales son

fácilmente reconocibles en el microscopio fo-

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

3JU3sne

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14

Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

tónico, incluso en preparaciones montadas en

agua (Figs. 17-18, 23-25).

Las valvas son largamente lanceoladas, va-

riando a linear-lanceoladas, con extremos re-

dondeados, no rostrados a levemente rostra-

dos. Eje apical 66-184 jm, transapical 6-14,4

um. Los márgenes valvares pueden ser parale-

los en la parte media de la valva (Figs. 23, 25,

28, 29) o bien uno de ellos es notablemente

más curvado que el otro (Figs. 20, 22, 26). La

rafe es marginal y no existe nódulo central.

Las fíbulas y las costillas transapicales se en-

cuentran en igual número, variando entre 10-

19 en 10 um tanto al centro de la valva como

hacia los extremos. La membrana intercostal

está perforada por dos (Figs. 32-36, 38), rara-

mente tres (Fig. 37), líneas de poroides. Poroi-

des 4-8 en lum.

En 1965 Hasle dio el nombre de Nitzschia

pseudoseriata a un taxon descrito por Frengue-

lli en 1939 para el Atlántico Sur (Pseudonitzs-

chia australis). Aunque la autora no pudo estu-

diar el material original de Frenguelli, indicó

que éste era muy cercano a la Nitzschia seriata

Cleve, diferenciándose principalmente por la

forma de la valva y por su distribución. N.

pseudoseriata presentaría valvas con márgenes

más o menos paralelos en su parte media y los

extremos serían levemente rostrados. Por el

contrario, N. seriata presentaría un lado con-

vexo y el otro casi derecho en la parte media

de la valva, y los extremos serían redondea-

dos, no rostrados. ÑN. seriata se distribuiría ex-

clusivamente en la parte norte del Hemisferio

Norte (desde los 40%N), mientras que la N.

pseudoseriata lo haría exclusivamente en el He-

misterio Sur (lo que reafirma en sus publica-

ciones de 1972 y 1976).

En 1972 Hasle recalcó sobre la base de su

publicación de 1965 que también existen di-

ferencias observables con microscopía electró-

nica entre ambas especies, específicamente en

el número de poroides de la membrana inter-

costal. N. serrata poseería 7-8 poroides en 1um

dispuestos en 2-5 líneas (a veces una sola),

mientras que N. pseudoseriata presentaría sólo

4-5 poroides en 1um dispuestos en dos líneas.

Fenner et al., 1976, en su publicación sobre

las diatomeas del Océano Pacífico Sur, citaron

a N. seriata para los 419%37'S - 75%08'W, indi-

cando que los frústulos encontrados concuer-

dan con las formas del “tipo seriata” como

15

también con las del “tipo pseudoseriata”. Se-

gún estos autores, la diferenciación entre am-

bas especies es cuestionable.

En el presente estudio hemos encontrado

una amplia variación de las características del

taxon, tanto de aquéllas visibles mediante mi-

croscopia fotónica (forma de la valva y sus

extremos) como también mediante microsco-

pia electrónica (poroides, fíbulas, etc.). En la

Tabla 1 se ha resumido la información conoci-

da para N. seriata, N. seriata f. obtusa y N. pseu-

doseriata, más las características observadas en

el presente estudio. Estas últimas representan

un evidente resumen de todas las característi-

cas de los taxa allí señalados.

La variación encontrada en el material chi-

leno (a veces en una misma muestra) permite

establecer un nexo gradual y directo entre la

N. seriata (y su forma obtusa) y la N. pseudoseria-

ta. La mayor diferencia entre ambos taxa es la

presencia, en el material chileno, de general-

mente dos (raramente tres) líneas de poroides

entre dos costillas transapicales. Aunque N.

seriata ha sido descrita de poseer 3-5 líneas, el

presente estudio demuestra que este carácter

si bien es cierto tiende a ser constante en algu-

nas especies, sufre variaciones en otras.

Sobre la base de la gran variación observada

y considerando que N. pseudoseriata fue tipifi-

cada mediante caracteres poco estables y no

claramente diferentes de aquellos de N. seria-

ta, consideramos a la primera, y a N. senata f.

obtusa, como sinónimo de N. seriata Cleve.

Distribución en Chile: N. serrata ha sido profu-

samente señalada a lo largo de toda la costa

chilena, tanto bajo este nombre o como N.

pseudoseriata Hasle (Rivera 1983), distribución

que se confirma en el presente estudio.

Nitzschia fraudulenta Cleve

Figs. 39-51

Cleve, P.T., p. 300, fig. 11 (1897a). Hasle,

G.R., p. 15, Lám. 1, figs. 2-3; Lám. 4, figs.

8-10; Lám. 6, figs. 5-10; Lám. 8, figs. 1-3

(1965). Takano, H. £e K. Kuroki, p. 43, figs. 3,

14-18 (1977). Takano, H., Sheet 75 (1981).

Sinonimia: Pseudonitzscha seriata var. fraudu-

lenta (Cl.) Peragallo, p. 300, Lám. 72, fig. 29

(1897-1902).

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

Localidad tipo: Plymouth Harbour, Mar del

Norte.

MATERIAL ESTUDIADO:

1820'S - 70%35'W, 18. 8.1972, DIAT-CONC M - 772

1821'S - 76%32'W, 19. 8.1972, DIAT-CONC M - 776

23%49'S - 70%33'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1074

23%49'S - 70%53'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1070

23%49'S - 7116'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1069

23%50'S - 70%42'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1072

24934'S - 72222'W, 31.12.1957, Balech 1962, DIAT-

CONC M - 1284

28%06'S - 71%29'W, 30. 8.1972, DIAT-CONC M - 1031

3302'S - 71937'W, 24. 1.1978, DIAT-CONC M - 1121;

29.10.1975, Avaria 1975, DIAT-CONC

M-861;11.3.1975, Avaria, 1976, DIAT-

CONC M - 855

3632'S - 72%57'W, Rivera y González 1984, 12. 9.1975,

DIAT-CONC M - 561; 12.9.1976,

DIAT-CONC M - 560

36%43'S - 73%07'W, 13. 5.1965, Rivera 1969, DIAT-

CONC M - 598

39%58'S - 74%27'W, 15. 3.1960, DIAT-CONC M - 753

39%59'S - 74%01'W, 15. 3.1960, DIAT-CONC M - 751

41%46'S - 73%05'W, Krasske 1941, 7.11.1937, Kassel N*

4134/4135, DIAT-CONC M - 1449;

18.11.1937, Kassel 4137/4138, DIAT-

CONC M - 1453.

41%46'S - 732907'W, 5. 8.1977, DIAT-CONC M - 1272

41%48'S - 73%05'W, 29. 4.1977, DIAT-CONC M - 1260;

10.9.1977, DIAT-CONC M - 1266;

24.11.1976, DIAT-CONC M - 1258

4512'S - 75%28'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M - 1360

45%52'S - 75%40'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M - 1361

46930'S - 75%45'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M - 1362

50%22'S - 75%19'W, 18.11.1978, DIAT-CONC M - 1365

53%50'S - 71%45'W, 16.12.1975, DIAT-CONC M - 1185

Nitzschia fraudulenta Cl., Tralst. 242, 26.11.1959, 17%45'N

- 1630'W, G.R.H., W7, 83b Bremerhaven.

Nitzschia seriata Cl., y N. fraudulenta Cl., Norvegian Sea, 11

junio 1959, 6320'N - 200W, G.R.H., W?7, 96b Bremer-

haven.

Nitzschia subfraudulenta Hasle, Isotipo, Cape Town, I,

12.sep.1961, 34”21'S - 18”24,8'E, G.R.H., W7, 74b, Bre-

merhaven.

Como los frústulos son poco silificados,

presentan una apariencia muy delicada al mi-

croscopio fotónico. Las fíbulas y las costillas

transapicales son visibles solamente cuando se

confeccionan preparaciones permanentes con

resinas de alto índice de refracción y cuando

se emplea condensadores de campo oscuro y/o

contraste de fase (Figs. 44-46).

La sobreposición de los extremos para for-

mar filamentos no es mayor de 1/6 a 1/4 del

16

largo total del frústulo (Fig. 43). Las valvas son

lanceoladas o linear-lanceoladas; eje apical 50-

119 pm, transapical 5,6-10 pm. La rafe es

marginal. Las fibulae son mucho más notorias

que las costillas transapicales pero ambas se

encuentran aproximadamente en igual núme-

ro; las dos fíbulas centrales están más distan-

ciadas entre sí, indicando la presencia de un

nódulo central (Figs. 39-40, 42, 44-45, 47-48,

50-51). Fíbulas 12-24 (21-24) en 10 um. Costi-

llas transapicales 17-25 (23-24) en 10m. La

membrana intercostal está perforada por 2

(Figs. 50-51), a veces 3 (Fig. 48), líneas de

diminutos poroides. Poroides 4-7, general-

mente 5-6 en 1 um.

A pesar de la amplia variación observada

respecto a la forma de las valvas, no se encon-

tró ejemplares con márgenes lineares en su

parte media, los cuales según Hasle (1965)

tipifican a la N. subfraudulenta. Esta especie

presenta además un mayor número de costi-

llas transapicales que de fibulae.

N. fraudulenta puede ser fácilmente confun-

dida con N. seriata, y de hecho lo ha sido en

Chile en varios estudios anteriores. Sin embar-

go, la presencia de un nódulo central, perfec-

tamente visible mediante microscopia fotóni-

ca, es una característica presente sólo en la

primera especie.

Distribución en Chile: N. fraudulenta había si-

do señalada entre los 19%40'S y los 44*19'S

por Krasske (1941) como Pseudonitzschia seria-

ta var. fraudulenta (Cl.) Per. y por Hasle (1965 y

1972). En el presente estudio la especie fue

encontrada entre los 1820'S y los 53%50'S.

Nitzschía subpacifica Hasle

Figs. 52-55

Hasle, G.R., p. 20, Lám. 1, figs. 9-10; Lám. 8,

figs. 4-5; Lám. 10, figs. 1-8 (1965).

Localidad tipo: 17%45'N, 16%30'W.

MATERIAL ESTUDIADO:

1820'S - 7416'W, 8.8.1972, DIAT-CONC M - 1068

23"49'S - 71*16'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M - 1069

23"49'S - 70%48'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M - 1071

36%40'S - 73%08'W, 17.5.1966, DIAT-CONC M - 1065

41%46'S - 73907'W, 5.8.1977, DIAT-CONC M - 1272

Nitaschia subpacifica Hasle, Isotipo, 17"45'N - 16"30'W,

26.11.1959, W7, 77b, Bremerhaven.

Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

Solamente encontramos frústulos aislados

de esta pequeña y delicada especie. Según

Hasle (loc. cit.) el largo de la sobreposición de

los extremos valvares en los filamentos alcanza

a 1/5 ó 1/6 del largo de la célula. Unicamente

las preparaciones realizadas con resinas de

alto índice de refracción permiten visualizar

en el microscopio fotónico las fíbulas y, en

forma mucho menos detallada, las costillas

transapicales (Fig. 52).

Las valvas observadas son de reducidas di-

mensiones (eje apical 21-32u4m, transapical

2,7-4,24m), con un lado fuertemente convexo

y el ótro más o menos derecho. Los extremos

son redondeados, algunas veces algo puntia-

gudos. La rafe es marginal y el nódulo central

puede ser detectado en el microscopio fotóni-

co dado que las dos fíbulas centrales se en-

cuentran más distanciadas entre sí. Fíbulas 15-

21 en l0um. Las costillas transapicales son

bastante más numerosas, 29-36 en 10 ym.

Aunque en el microscopio electrónico de

transmisión da la impresión que la membrana

intercostal está perforada por dos líneas de

poroides (Figs. 53-54), en el de barrido se ob-

serva sólo una corrida entre dos costillas (Fig.

55). Poroides 5-7 (6) en l1um.

El escaso material chileno observado difiere

de la descripción original por su menor tama-

ño (33-70um largo y 5-7um ancho, según

Hasle 1965) y por presentar una sola línea de

poroides en la membrana intercostal. Sin em-

bargo, el presente estudio revela que estas ca-

racterísticas son variables dentro del género y

por lo tanto consideramos por el momento las

diferencias encontradas como un mayor ran-

go de variación para la especie. Esperamos

disponer en el futuro de mayor cantidad de

representantes de esta especie para conocer

con mayor exactitud su real variabilidad.

N. subpacifica es similar en contorno a algu-

nos representantes de N. serata, pero su me-

nor tamaño, delicada estructura, la presencia

de un nódulo central y una mayor proporción

de costillas transapicales que de fibulae, per-

miten diferenciarla fácilmente. Difiere de N.

fraudulenta por la forma de la valva y por su

estructura más delicada.

Distribución en Chile: N. subpacifica había sido

señalada por Hasle (1972) entre los 40%S -

¡Ez

43%S. El presente estudio demuestra que su

distribución hacia el norte alcanza por lo me-

nos hasta los 1820'S.

Nitzschia custadata Hasle

Figs. 56-70

Hasle, G. R., p. 34, Lám. 2, figs. 6-9; Lám. 15,

figs. 9-18; Lám. 16, figs. 1-2 (1965). Simonsen,

R., p. 51, Lám. 39, figs. 1-3 (1974).

Localidad tipo: Las Palmas, Islas Canarias.

MATERIAL ESTUDIADO:

3302'S - 71%37'W, 1968, DIAT-CONC M - 198;

11.3.1975, Avaria 1976, DIAT-CONC

M - 855.

3632'S - 72%57'W, 12.9.1976, Rivera y González 1984,

DIAT-CONC M - 560

3637'S - 72%57"W, 6. 2.1966, Rivera (1969, DIAT-

CONC M - 868

3800'S - 7350'W, 22.11.1978, DIAT-CONC M - 1356

Nuzschia cuspidata Hasle, 17%45'N - 1630'W, 26.1 1.1959,

W7, 77b, Bremerhaven.

Los frústulos son de aspecto delicado en el

microscopio fotónico; la sobreposición de los

extremos en los filamentos no es mayor de 1/5

a 1/6 del largo total de la célula (Fig. 56). Las

valvas son linear-lanceoladas con extremos

aguzados; (Figs. 57-62), eje apical 54-86um,

transapical 2,5-3,9um. La rafe es excéntrica y

existe nódulo central (Figs. 65-70). Sólo las

fíbulas (14-19 en 10um) son visibles en el

microscopio fotónico, las dos centrales están

más distanciadas entre sí (Figs. 57-58). Las

costillas transapicales son numerosas, 30-39

en 10u4m. La membrana intercostal está perfo-

rada por una corrida de poroides más o menos

cuadrangulares, 4-6 en 1um (Figs. 63-70).

Por la forma de la valva N. cuspidata podría

ser confundida con N. delicatissima Cleve, pero

la estructura de la membrana intercostal es

completamente diferente. La diferenciación

entre ambas especies requiere por lo tanto del

uso de técnicas de microscopia electrónica. N.

pseudodelicatissima presenta también una línea

de poroides en la membrana intercostal, pero

el contorno de la valva es completamente dife-

rente.

Indudablemente el rango de variación de

los caracteres morfológicos de N. cuspidata es

mayor del señalado por Hasle (1965). Simon-

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

sen (loc. cit.) encuentra en el material del IOE

un menor número de fíbulas (16-18 en 104 m)

del indicado en la descripción original (18-22),

aunque Hasle (loc. cit.) ya suponía que ellas

podían variar entre 16 y 22 en 10m. De esta

forma, el menor número de fíbulas encontra-

do en el material chileno debe ser considerado

como dentro del rango de variación de esta

característica. Por lo tanto, si un futuro análi-

sis del material de Frenguelli y Orlando (1959)

correspondiente a la Nitzschia pertenuis de-

muestra que ella presenta nódulo central, la

especie debería ser considerada como sinóni-

mo de N. cuspidata.

Distribución en Chile: La especie se distribuye

entre los 33%02'S y los 38%00'S. No había sido

señalada anteriormente para el litoral chileno.

-Nitzschia delicatissima Cleve

Figs. 71-81

Cleve, P.T., p. 24, Lám. 2, fig. 22 (1897b).

Sinonimia: Nitzschía actydrophila Hasle, G.R.,

p909 Lam: 2. 119.010; Lám. 15; figs. 19-23;

Lám. 16; figs. 3-7 (1965).

Localidad tipo: 63%10'N - 0936'E.

MATERIAL ESTUDIADO:

18917'S - 73%16'W, 18. 8.1972, DIAT-CONC M - 771

18920'S - 70%35'W, 16. 8.1972, DIAT-CONC M - 761;

18.8.1972, DIAT-CONC M - 772

18%20'S - 74%16'W, 8. 8.1972, DIAT-CONC M - 1068

2349'S - 70%33'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1074

23%49'S - 70%48'"W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1071

23%49'S - '70%53'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1070

23%49"S - 71%16'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1069

23%50'S - 70%42'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1072

33%02'S - 71%37'W, 3. 2.1966, DIAT-CONC M - 1118;

1968, DIAT-CONC M - 198

33%36'S - 78%39'W, 5. 9.1972, DIAT-CONC M - 1073

36%43'S - 73%07'W, 25. 2.1966, Rivera 1969, DIAT-

CONC M - 863

39%58'S - 74912'W, 15. 3.1960, DIAT-CONC M - 752

39%59'S - 74%01'W, 15. 3.1960, DIAT-CONC M - 751

41%48'S - 73%05'W, 24.11.1976, DIAT-CONC M - 1258;

5.8.1977, DIAT-CONC M - 1264

42%07'S - 73%29'W, abril 1978, DIAT-CONC M - 1126

Los frústulos son largos y delgados en vista

conectival, lineares, con extremos algo sig-

moides. La sobreposición de los extremos en

los filamentos es muy corta, alrededor de 1/8

18

de largo total de la célula (Fig. 71). Las valvas

son tan poco silificadas que en el microscopio

fotónico las fíbulas son apenas visibles, de nin-

guna forma las costillas transapicales (Figs.

72-73). Las valvas son linear-lanceoladas con

extremos redondeados. Eje apical 34-88um,

transapical 1,7-3,9u4m. La rafe es marginal y

existe nódulo central (Fig. 72-80). Las fíbulas

se disponen en número de 15-24 en 10jum;,

aunque las dos centrales están más distancia-

das entre sí, esta característica es a veces difícil

de observar en el microscopio fotónico. Las

costillas transapicales varían entre 27 y 39 en

10 um y la membrana intercostal está perfora-

da por dos corridas de poroides circulares

(Figs. 76, 80-81). Poroides 6-11 en lpm.

La especie es bastante variable en sus carac-

terísticas morfológicas (Tabla 11). Además de

formas típicas, también encontramos valvas

que son de menor y de mayor longitud, más

angostas o más anchas y con menor número

de fíbulas y de costillas transapicales de lo

indicado por Hasle (loc. cit.). Sus similitudes

con especies afines ya han sido discutidas

(p. 17).

Distribución en Chile: N. delicatissima era co-

nocida entre los 20%12'S y los 45%50'S (Hasle,

1965; Rivera, 1983). En el presente estudio

fue encontrada entre los 18%17'S y los

4207"S.

Nitzschia inflatula Hasle

Figs. 82-90

Hasle, G.R., p. 33, Lám. 13, figs. 7-10; Lám.

15, figs. 1-8 (1965).

Localidad tipo: Estrecho de Dinamarca, 62%N

- 339.

MATERIAL ESTUDIADO:

18%20'S - 74%16'W, 8. 8.1972, DIAT-CONC M - 1068

23%49"S - 70%33'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1074

23%49'S - 70%48'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1071

23%49'S - 70%53'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1070

23%49'S - 719%16'W, 24. 8.1972, DIAT-CONC M - 1069

23%50'S - 70%42'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1072

33%02'S - '71937'W, Avaria 1971, 14.10.1964, DIAT-

CONC M - 857

Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

33%34'S - 71%37'W, Montecino y Lopehandia 1972,

16.1.1968, DIAT-CONC M - 1030

3336'S - 78%02'W, 5. 9.1972, DIAT-CONC M - 1201

53%04'S - 70%40"W, Hendey 1937, 23. 4.1931,St. WS 580,

DIAT-CONC 2346/2347

56”19.5'S - 67%09'"W, Hendey 1937, 16.4.1930, St. 388,

DIAT-CONC 2350/2351

Nitzschia inflatula Hasle, Isotipo 62%N - 33%W, 10. Aug.

1960, G.R.H., W7, 96a, Bremerhaven.

Los frústulos son largos y angostos, poco

silificados, unidos en filamentos por sobrepo-

sición de sus extremos, la cual no es mayor de

1/7 del largo total de la célula (Fig. 83).

Las valvas son lineares, algo dilatadas en la

parte media y también, pero en menor grado,

antes de los extremos (Figs. 82, 85, 88-89). Los

extremos mismos son levemente aguzados.

Eje apical 77-116um, transapical 2,1-44m en

su parte más ancha. La rafe es totalmente ex-

céntrica. En el microscopio fotónico (Figs. 82,

84) las fíbulas (14-22 en 10u4m) son mucho

más evidentes que las costillas transapicales

(25-37 en 10um). Las dos fíbulas centrales

están más distanciadas entre sí. Nódulo cen-

tral presente, visible incluso en preparaciones

montadas en agua. La membrana intercostal

está perforada por una línea de grandes po-

roides, 4-6 en 1um, de contorno redondeado

a Cuadrangular, subdivididos por una pared

transapical (Figs. 88, 90).

La especie puede ser reconocida fácilmente

en el microscopio fotónico por la forma y ta-

maño de las valvas, la presencia de un nódulo

central y el mayor número de costillas transa-

picales que de fíbulas. La dilatación central de

la valva es siempre evidente, pero aquélla si-

tuada antes de los extremos puede pasar fácil-

mente desapercibida si no se emplea técnicas

adecuadas de microscopia.

En el material estudiado encontramos un

mayor rango de variación de las características

morfológicas de esta especie respecto a las se-

ñaladas por Hasle (1965) en la descripción

original (Tabla IT).

La especie se diferencia de N. pseudodelica-

tissima Hasle por las dilataciones de la valva y

por el menor número de costillas transapi-

cales. :

Distribución en Chile: N. ¿nflatula no había

sido señalada anteriormente para la costa chi-

19

lena. Fue encontrada entre los 18%20'S y los

56”19'S.

Nitzschia pseudodelicatissima Hasle

Figs. 91-102

Hasle, G.R. in Hasle € Mendiola, p. 115

(1967). Takano, H. £ K. Kuroki, p. 44, figs.

21-25 (1977).

Sinonimia: Nitzschia delicatula Hasle, p. 37,

Lám. 14, figs. 4-5; Lám. 16, figs. 8-18; Lám.

17, figs. 1-16 (1965), non Nitzscha delicatula

Skvortzow, p. 26, 1946.

Localidad tipo: Estrecho de Dinamarca,

60%18'N - 3100'W.

MATERIAL ESTUDIADO:

23%50'S - 70%42'W, 25. 8.1972, DIAT-CONC M - 1072

24%34'S - 72%22'W, 31.12.1957, Balech 1962, St. 28,

DIAT-CONC M - 1284

2953'S - 71%19'W, 20.10.1983, DIAT-CONC M - 1577

33%02'S - 71%37'"W, 10. 3.1964, Avaria 1965, DIAT-

CONC M - 1119; 3.2.1966, DIAT-

CONC M - 1118; 24.1.1978, DIAT-

CONC M - 1121

35%33'S - 72%42'W, 5. 3.1960, DIAT-CONC M - 730

3632'S - 72%57'W, 12. 9.1976, Rivera y González 1984,

DIAT-CONC M - 560

36%37'S - 72%57'"W, 77.11.1937, Krasske 1941, Kassel N*

4134/4135, DIAT-CONC M - 1449

36%40'S - 73%08'W, 4. 2.1966, Rivera 1969, DIAT-

CONC M - 875

36%43'S - 73%07'W, Rivera 1969, 13.5.1965, DIAT-CONC

M - 598; 26.12.1965, DIAT-CONC M -

869; 17.10.1968, DIAT-CONC M - 865

37%10'S - 73%11'W, 11. 4.1977. Rivera y Valdebenito

1979, DIAT-CONC M - 664

38%00'S - 73%50'W, 22.11.1978, DIAT-CONC M - 1356

41%46'S - 73%05'W, 18.11.1937, Krasske 1941, Kassel N?

4137/4138, DIAT-CONC M - 1453

41%48'S - 73%05'W, 24.11.1976, DIAT-CONC M - 1258;

29.4.1977, DIAT-CONC M - 1260;

10.9.1977, DIAT-CONC M - 1266;

5.8.1977, DIAT-CONC M - 1264

45%12'S - 75%28'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M - 1360

45%52'S - 75%40'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M - 1361

4630'S - 75%45'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M - 1362

50%22'S - 75%19'W, 18.11.1978, DIAT-CONC M - 1391

51%12'S - 74%05'W, 10.10.1972, DIAT-CONC M - 634

53%13'S - 73914'W, 16.12.1975, DIAT-CONC M - 907;

17.12.1975, DIAT-CONC M - 1147

Nitzschia pseudodelicatissima Hasle, Isotipo, 60%18'N -

3100'W, 24.May.1898, W7; 95a, Bremerhaven.

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

Los frústulos son muy poco silificados y en

el microscopio fotónico sólo las fíbulas son

visibles (Figs. 94-96). La sobreposición de los

extremos para formar filamentos no es mayor

de 1/5 a 1/6 del largo total de la célula (Fig. 91).

Las valvas son angostas, lineares o sublinea-

res, adelgazándose sólo cerca de los extremos

que son redondeados y poco silificados. Eje

apical 50-109um, transapical 1,5-3,44m. La

rafe es marginal. Fíbulas 18-24 en 10m, las

dos centrales más distanciadas entre sí. Nódu-

lo central presente (Figs. 97, 101-102). Costi-

llas transapicales 32-42 en 10u4m. La membra-

na intercostal está provista de una sola línea de

poroides de forma más o menos cuadrangu-

lar, 5-8 (5-6) en ljum (Figs. 99-101).

Nuevamente el material estudiado muestra

mayor variación morfológica de la señalada en

la descripción original. La especie más cercana

a N. pseudodelicatissima es N. inflatula y sus dife-

rencias se comentan bajo esa última especie.

Distribución en Chile: N. pseudodelicatissima se

distribuye entre los 23%50"S y los 5313'S. Ha-

bía sido señalada anteriormente por Hasle

(1965) para los 4295.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Aunque algunas de las características morfo-

lógicas que permiten una segura determina-

ción de los taxa de la sección Pseudonitzschia

son visibles únicamente mediante microscopia

electrónica (número de líneas de poroides en

la membrana intercostal, número de porol-

des, etc.), el presente estudio demuestra tam-

bién que ciertas características visibles con mi-

croscopia fotónica pueden ser utilizadas en la

taxonomía del grupo. Debe recordarse ade-

más que muchos de los caracteres perfecta-

mente definibles con los microscopios electró-

nicos, también lo son, en cierto grado, con el

microscopio fotónico especialmente cuando se

emplean todas sus técnicas (contraste de fase,

de interferencia, campo oscuro, etc.), y sobre

todo, cuando se conoce lo que se debe obser-

var y dónde se debe buscar.

De esta forma, y utilizando en lo posible los

caracteres más estables del género visibles me-

diante microscopia fotónica, se entrega una

20

clave para la separación de los taxa presentes

en la costa chilena. Sin embargo, Nitzscha cus-

pidata y N. delicatissima deben ser determina-

das mediante caracteres visibles exclusiva-

mente con microscopía electrónica. La prime-

ra presenta una sola línea de poroides en la

membrana intercostal (4-6 en 1 um), mientras

que N. delicatissima tiene dos líneas de peque-

ños poroides, 6-11 en 1 qm.

La gran cantidad de material analizado per-

mite visualizar claramente la amplia variabili-

dad de los diferentes caracteres que se em-

plean para definir a las especies, y el presente

estudio demuestra que el rango de variación

es aun mayor del que se conocía (Tablas 1 y II).

Por esta razón, la separación de la sección

Pseudonitzschia en dos complejos (N. seriata y

N. delicatissima) sobre la base del ancho de las

valvas, debe ser considerado sin mucho énfa-

sis. Hasle (1965), al proponer tal separación,

indica como valor límite a 44m: si es mayor

correspondería al complejo N. seriata y al

complejo N. delicatissima si es menor. La lon-

gitud del eje transapical demostró ser una ca-

racterística tan variable en el presente estudio

que si se aplica la idea de Hasle algunas espe-

cies quedan incluidas en el complejo que no les

corresponde (Ej. N. subpacifica, 2,7-4,24m an-

cho) o su inclusión en uno de ellos es dudosa

por quedar muy cerca del límite indicado (Ej.

N. imflatula, 2,1-4um ancho; N. cuspidata, 2,5-

3,9um ancho; N. delicatissima, 1,7-3,9um an-

cho). Al no existir características que permitan

una segura subdivisión de la sección Pseudo-

nitzschia, es aconsejable considerar al grupo

como un todo.

La forma de las valvas (y en mayor grado de

sus extremos) y el largo del eje apical son otros

caracteres que se usan comúnmente con valor

taxonómico para individualizar las especies.

La variabilidad de N. seriata en el material

chileno, desde su forma típica hasta formas

correspondientes con la N. pseudoseriata, de-

muestra que los mencionados caracteres no

deberían ser utilizados en forma individual

para definir a un determinado taxon.

La presencia o ausencia de nódulo central

en la rafe es un carácter muy constante para

todas las especies estudiadas. Si está presente

puede ser fácilmente detectado mediante mi-

croscopia fotónica al utilizarse contraste de

fase o campo oscuro: la mayor separación en-

Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

a3JUISIIA

1T-9 3 68-13 EN 6'8L'I 88-P8 orpnas3 :a1d

(vpydoupko0 N)

aJuU3s3Id 3T-01 3 0-98 33:61 qe) 9L-0? S961 “9ISPH DULSSYDIYIP *N

aJUISIAA 9-p I 68-08 61-P1 6-97 98-PG orpnas3 :a1d

(18-98) (33-81)

ayuasard 9-8 I L8-¿63 33-¿91 geo (¿06)08-08 S961 “91SPH vopidsn? “N

(9-5)

a1UISIIA 8-S I Gb 73€ b38l vE-S 1 601-0S orpnasa :a1d

(0ni092p *N)

aJuasaud 9-p I (¿)9b-0€ 93-91 zo 1 OPb1-6S 5961 “IStH DUNSSIDINIPOpNISA *N

ayuasaid 9-p I L€-SZ 33-b1l 17 91T-22 orpnasa :a1d

aJu3s3u1d G I 3-38 13-81 87-51 001-09 S961 “9[SPH oniopfur eN

ayuasaud (9)2-< (¿z)1 98-67 13-S1 yz 38-13 o1pnasa “31d

ayuasard 01-6 Z Z£-87 03-S1 LG 0L-€€ S961 “2ISPH vnfirodqns N

(9-5) (P2-€Z) (83-13)

a1u3s3u1d + (2e-3 S3-L1 P3-3l 01-9'S 611-068 orpnasa :a1d

a1U3S3u1d 9-S (€-3)€-1 +81 b33l g'9-'p TI I-p9 S961 “9[SPH vjuampno.f :N

(PI-31)

3JUISNE $-8 (ez L16 G1-6 g'9-p PLI-L8 orpnasa “31d Eco

aJuasne se (2-1 SI-6 SI-6 Gp-< GP I-bL G961 “9IStH eN

[e11us) (und]) [81509131u1 (undp1) (undgp1) (vr) (un) 10me a1madsy

o¡npgu sapro1od PuP1quIau sayeoidesue. senquy ¡eoidesue.1 peo1de

u3 sapio.od Se[]nso) alo ala

3p Se3u]

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TA NA SOUVALNOONA VIHOSZLINOGNASAd NOIDOAS VT HA SALNV.LNASAAAAA SOT HA SVOIDOTOAJOO SVOILLSIJALOVUVO

Medem

21

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

tre las dos fíbulas centrales es notoria.

Varias de las especies estudiadas presentan

una apariencia tan delicada en el microscopio

fotónico que prácticamente sólo la forma de

las valvas y las fíbulas son reconocibles. En

todas ellas el número de costillas transapicales

es aproximadamente el doble que el de fíbu-

las. Es el caso de N. subpacifica, N. inflatula, N.

pseudodelicatissima, N. cuspidata y N. delicatassi-

ma. Por el contrario, en N. seriata, N. pungens y

N. fraudulenta, las fíbulas y las costillas transa-

picales se encuentran en igual cantidad y no

son muy numerosas, y por ende ambas son

perfectamente visibles y contables en el mi-

croscopio fotónico, aunque en la última espe-

cie no son tan evidentes como en las dos pri-

meras. De esta forma, la razón número de

fíbulas/número de costillas transapicales, ínti-

mamente relacionada con el aspecto de las

valvas en el microscopio fotónico, demostró

ser una característica tan estable en las espe-

cies estudiadas que puede ser utilizada con

valor taxonómico.

Hasle (1965) indica que la membrana inter-

costal de los representantes del grupo en estu-

dio está perforada por 1-4 líneas de poroides,

carácter que sólo puede ser observado me-

diante microscopía electrónica. En las especies

analizadas en este estudio el número total de

líneas de poroides entre dos costillas transapi-

cales varió entre uno y tres. Es constante en

algunos taxa: N. pseudodelicatissuma oa N.

cuspidata (una), N. delicatissuma (dos), N. imflatu-

la (una). En N. pungens, N. fraudulenta y N.

seriata se presentan dos a tres líneas, pero la

gran mayoría de los individuos exhibieron só-

lo dos. Hasle (1965) reporta para N. pungens y

N. fraudulenta la ocasional existencia de una

sola línea de poroides en la membrana inter-

costal, y de tres a cinco para la N. seriata. Es por

lo tanto un carácter variable para ciertas espe-

cies y por ello las diferencias encontradas en el

material chileno de N. subpacifica respecto a la

descripción original deben ser consideradas

como dentro del rango de variación del taxon.

El número de poroides en cada línea parece

ser aun más constante para cada especie, pero

dentro de un determinado rango de varia-

ción. El alto número de valvas observadas y

medidas en este estudio permitió conocer con

mayor exactitud tal rango. Al respecto se en-

trega nueva información para la N. fraudulen-

22

ta, N. seriata, N. subpacifica, N. inflatula, N. pseu-

dodelicatissima, N. cuspidata y N. delicatissima.

La estructura del cingulum, que ha demos-

trado ser un buen carácter taxonómico para

delimitar las especies de algunos géneros de

diatomeas, es escasamente conocida para la

sección Pseudonitzschia (Hasle, 1965). Dado

que el material analizado en este trabajo provi-

no de diferentes herbarios y fue recolectado

en su mayoría hace muchos años, la estructura

del cingulum no pudo ser estudiada. Trabajos

posteriores demostrarán si ella puede ayudar

a la clarificación de este difícil género.

La distribución de las especies en el área de

estudio parece ser bastante definida. Nitzschia

pungens, N. fraudulenta, N. pseudodeliwcatissima,

N. seriata y N. imflatula se presentan práctica-

mente a lo largo de toda la costa chilena y

durante las cuatro estaciones del año. Son

principalmente especies neríticas, con excep-

ción de N. imflatula que también fue común en

muestras recolectadas en la zona oceánica. Las

tres primeras especies presentan una amplia

distribución en todos los océanos y son consi-

deradas cosmopolitas (Hasle, 1965 y 1976). Si

N. seriata y N. pseudoseriata representan sólo las

variaciones de un mismo taxon, éste también

debe ser considerado cosmopolita. N. inflatula

ha sido escasamente señalada en la literatura,

pero su distribución parece ser muy amplia:

Estrecho de Dinamarca y aguas subantárticas

(Hasle, 1965), Océano Índico, Golfo Pérsico

(Simonsen, 1974). También podría encontrar-

se en el Pacífico tropical, ya que Hasle (1960)

supone que lo que ella llamó N. delacatissima

podría tratarse en realidad de N. inflatula.

De las cinco especies citadas anteriormente,

N. seriata y N. pungens destacan por su frecuen-

cia y abundancia. La primera estuvo presente

en el 70% de las muestras analizadas, pero fue

abundante solamente en aquellas recolectadas

durante el verano, especialmente entre los

33%S y los 47%47'S. En la zona norte de Chile

fue siempre muy escasa. N. pungens es, dentro

del género, la segunda especie importante del

fitoplancton chileno y se presenta general-

mente acompañado a la N. seriata. Fue deter-

minada en el 42,7% de las muestras, siendo

abundante entre los 33%S y los 385 durante

primavera, verano y otoño. N. pseudodelicatissi-

ma, N. fraudulenta y N. inflatula nunca fueron

abundantes en el material estudiado.

Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

Nitzscha delicatissima y N. subpacifica fueron

encontradas entre los 1895 y los 4298, abarcan-

do por lo tanto la región temperada cálida

(hasta los 3395) y una zona de transición entre

los 33%S y los 42%S (Brattstróm 8 Johanssen,

1983). N. delicatissima es una especie nerítica

descrita por Cleve para el Atlántico norte.

Hasle (1965) la encuentra en los fiordos de

Oslo, en el mar noruego y al N.W. de Africa;

Takano y Kuroki (1977) la señalan con ciertas

dudas para la costa de Japón. En Chile se

presenta durante todo el año, pero en escasa

cantidad. N. subpacifica es una especie de

aguas temperadas y cálidas de ambos hemisfe-

rios (Hasle, 1965 y 1976). En el presente estu-

dio fue encontrada en escasa cantidad en cin-

co muestras oceánicas recolectadas durante

primavera y verano.

La distribución general de Nitzschia cuspida-

ta es poco conocida. Hasle (1965) la señala

para el Atlántico norte y Simonsen (1974) pa-

ra el Océano Indico, Golfo Pérsico y Mar Ará-

bigo. En Chile la encontramos entre los 33% y

los 38%S, en muestras neríticas recolectadas

durante primavera y verano y siempre en es-

casa cantidad.

La gran variabilidad observada en los re-

presentantes estudiados de la sección Pseudo-

nitzschia revela que la determinación de los

taxa debe ser realizada luego de un cuidadoso

estudio del material. La observación de mate-

rial montado en agua no permite reconocer

las características morfológicas necesarias pa-

23

ra definir las especies. Por lo tanto, las mues-

tras deben ser oxidadas y montadas en resinas

con alto índice de refracción. Material de com-

paración, bibliografía y el conocimiento del

rango de variación de las características mor-

fológicas del frústulo, son factores que deben

ser considerados cuidadosamente antes de

realizar una determinación.

AGRADECIMIENTOS

El autor expresa su agradecimiento a la Direc-

ción de Investigación de la Universidad de

Concepción por el financiamiento recibido

para ejecutar la presente investigación y por

las facilidades otorgadas para utilizar el Labo-

ratorio de Miscroscopia Electrónica. Agradez-

co sinceramente la ayuda del personal de ese

laboratorio. Agradezco también la asistencia

técnica brindada por la Sra. Edith Montero,

Técnico Laborante del Departamento de Bo-

tánica de la Universidad de Concepción,

quien fue una pieza fundamental en el desa-

rrollo de esta investigación.

Mi reconocimiento y gratitud para los si-

guientes curadores e investigadores que facili-

taron material para esta investigación: Prof.

Dr. Enrique Balech (Argentina), Prof. Dr.

Reimer Simonsen (Alemania Federal), Prof.

Dr. G. Follman (Alemania Federal), Miss P.A.

Sims (Inglaterra), Prof. Dr. Sergio Avaria

(Universidad de Valparaíso, Chile) y Prof. Dr.

Vivian Montecino (Universidad de Chile,

Chile).

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

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Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

Fics. 1-13. Nitzschia pungens. Fics. 1-3, L.M. Fics. 4-9, TEM. Fics. 10-13, SEM. Escala: 10m, excepto cuando se indica

otro valor. Fic. 1. Dos células unidas. 43%04'S - 73934'W, enero 1978, DIAT-CONC M-1122. Fic. 2. Valva. Bahía de

Valparaíso, 33%02'S - 71*37'W, Avaria 1976, 11.3.1975, DIAT-CONC M-855. Fic. 3. Valva. Bahía de Concepción,

36"43'S - 73%07'W, 17.10.1968, DIAT- CONC M-865. Fics. 4-6. Extremo, zona anterior y centro de una misma valva.

43"04'S - 7334'W, enero 1978, DIAT-CONC M-1122. Membrana intercostal perforada por 2 líneas de poroides; nódulo

central ausente. Fic. 7. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71%37'W, 3.2.1966, DIAT-CONC M-1118. Fic. 8. Valva completa.

Bahía de Concepción, 36*37'S - 72%57'W, 15.10.1970, Rivera y González 1984, DIAT-CONC M-207. Fic. 9. Centro

valvar; membrana intercostal a veces perforada por 3 líneas de poroides (flecha). Bahía de Concepción, 36"43'S -

73%07'W, 17.10.68, DIAT-CONC M-865. Fics. 10-12. Extremo, zona anterior y centro de una misma valva. FiG. 12,

escala: 1um. 47%47'S - 74%54'W, 1.10.1972. DIAT- CONC M-624. Fic. 13. Centro valvar; membrana intercostal a veces

perforada por 3 líneas de poroides (flechas). 49%52'S - 74%23'W, 17.11.1978, DIAT-CONC M-1389.

21

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

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Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RivERA R.

Fics. 14-28. Nitzschia seriata. Fics. 14-18, 23-25, LM. Fics. 19-22, SEM. Fics. 26-28, TEM. EscaLa: 10um. FiG. 14.

Nitzschia pseudoseriata Hasle, 20 April 1967, Cape Town N” II, 30%45'S - 17%53,6'E, W7 84b, Bremerhaven, especimen en

círculo. Fic. 15. Cuatro células unidas. Bahía de Concepción, 36"43'S - 73%07'W, 25.4.1965, Rivera 1969, DIAT-CONC

M-1040. Fic. 16. Sobreposición de extremos valvares en un filamento. DIAT-CONC M-1040. Fi. 17. Valva con ur

margen más curvado que el otro. 41%46'S - 73%05'W, 7.11.1937, Kassel N“4134/4135, Krasske 1941. DIAT-CONC

M-1449. Fic. 18. Valva con márgenes convexos, no muy diferentes entre sí. Fíbulas y costillas transapicales evidentes.

51%12'S - 74%05'W, 10.10.1972, DIAT-CONC M-634. Fic. 19. Valva con márgenes más o menos paralelos en la parte

media. 2328'S - 70%31'W, 24.9.1963, DIAT-CONC M-172. Fic. 20. Valva con un margen notablemente más curvado

que el otro. 53%50'S - 71%45'W, 16.12.1975, DIAT-CONC M-1185. Fic. 21. 3710'S - 73%11'W, 11.4.1977, Rivera y

Valdebenito 1979, DIAT-CONC M-664. Fic. 22. Un margen valvar es más curvado que el otro. 23"28'S - 7031'W,

24.9.1963, DIAT-CONC M-172. Fic. 23. Márgenes valvares paralelos en la parte media. Bahía de Concepción, 36*43'S -

73%07'W, 17.10.1968, DIAT-CONC M-865. Fic. 24. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71*37'W, 11.3.1975, Avaria 1976,

DIAT-CONC M-855. Fic. 25. Bahía de Concepción, 36%43'S - 73%07'W, 17.10.1968, DIAT-CONC M-865. Fic. 26.

43%04'S - 7334'W, enero 1978, DIAT-CONC M-1122. Fic. 27. Bahía de Concepción, 36"43'S - 73%07'W, 17.10.1968,

DIAT-CONC M-865. Fic. 28. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71*37'W, 11.3.1975, Avaria 1976, DIAT-CONC M-855.

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Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

Fics. 29-38. Nitzschia seriata. Fics. 29-31, 36-38, TEM. Fics. 32-35, SEM. Escala: 10 um, excepto cuando se indica otro

valor. Fic. 29. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71%37'W, 3.2.1966, DIAT-CONC M-1118. Fic. 30. Bahía de Concepción,

3643'S - 73%07'W, 17.10.1968, DIAT-CONC M-865. Fic. 31. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 7137'W, 10.3.1964,

Avaria 1965, DIAT-CONC M-1119. Fics. 32-33. Extremo y centro de valva. 29%53'S - 71%19/W, 20.10.1983, DIAT-

CONC M-1577. Fic. 34. Extremo valvar. Bahía de Concepción, 36%40'S - 73%08'W, 17.5.1966, Rivera 1969, DIAT-

CONC M-1065. Fic. 35. Centro valvar. Bahía de Concepción, 3644'S - 73%01'W, 21.11.1965, Rivera 1969, DIAT-CONC

M-597. FiG. 36. Detalle de un extremo valvar. Bahía de Concepción, 36%43'S - 73%07'W, 17.10.1968, DIAT-CONC

M-865. FiG. 37. Membrana intercostal perforada por 3 líneas de poroides. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71%37'W,

10.3.1964, Avaria 1965, DIAT-CONC M-1119. Fic. 38. Dos líneas de poroides en la membrana intercostal. Escala: lum.

Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71937'W, 11.3.1975, Avaria 1976, DIAT-CONC M-855.

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Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RivERA R.

Fics. 39-51. Nitzschia fraudulenta. Fics. 39-42, SEM. Fics. 43-46, LM. Fics. 47-51, TEM. Escala: 10um, excepto cuando se

indica otro valor. Fic. 39. Valva nódulo central evidente (flecha). 53%50'S - 71%45'W, 16.12.1975, DIAT-CONC M-1185.

Fic. 40. 50%22'S - 75%19'W, 18.11.1978, DIAT-CONC M-1365. Fics. 41-42. Extremo y centro valvar. 39%58'S - 74*27'W,

15.3.1960, DIAT-CONC M-753. Fic. 43. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71*37'W, 24.1.1978, DIAT-CONC M-1121.

Fics. 44-46. Valvas lanceoladas a linear-lanceoladas. Nódulo central presente (flechas). Bahía de Valparaíso, 33%02'S -

71%37'W, 11.3.1975, Avaria 1976, DIAT-CONC M-855. Fic. 47. Estero Chope. 41%48'S - 73%05'W, 10.9.1975, DIAT-

CONC M-1266. Fic. 48. Centro valvar. Membrana intercostal perforada por dos o tres líneas de poroides. 46"30'S -

75%45'W, 16.11.1978, DIAT-CONC M-1362. Fics. 49-50. Extremo y centro de una valva. El nódulo central y dos líneas

de poroides en la membrana intercostal son evidentes. Escala: Im. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71%37'W, 11.3.1975,

Avaria 1976, DIAT-CONC M-855. Fic. 51. Centro valvar. Escala: ljum. 41%48'S - 73%05'W, 10.9.1977, DIAT-CONC

M-1266.

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Especies chilenas de Nitzschia: PATRICIO RIVERA R.

Fics. 52-55. Nitzschia subpacifica. FiG. 52, LM. Fics. 53-54, TEM. Fic. 55, SEM. Estala: 1um, excepto cuando se indica

otro valor. FiG. 52. Sólo las fíbulas son visibles en el microscopio fotónico. Escala: 10m. 18%20'S - 74%16'W, 8.8.19792,

DIAT-CONC M-1068. Fics. 53-55. Detalle de las valvas. 18920/S - 7416'W, 8.8.1972, DIAT-CONC M-1068.

Fics. 56-70. Nitzschia cuspidata. Fics. 56-58, LM. Fics. 59-68, SEM. Fics. 69-70, TEM. Escala: 10um, excepto cuando se

indica otro valor. Bahía de Valparaíso, 33%02'S - 71%37'W, 11.3.1975, Avaria, 1976, DIAT-CONC M-855. Fic. 56.

Sobreposición de los extremos valvares no es mayor de 1/5 a 1/6 del largo total de las células. Fics. 57-58. Sólo las fíbulas

son visibles en el microscopio fotónico; nódulo central presente (flechas). Fics. 59-62. Valvas de contorno linear-

lanceolado. Fics. 63-64. Extremo y centro de una valva. Fic. 65. Nódulo central y una línea de poroides más o menos

cuadrangulares en la membrana intercostal. Escala: 1um. Fics. 66-67. Extremos y centros de valvas. Fic. 68. Centro de

una valva. FiG. 69. Valva completa. FiG. 70. Detalle del extremo y centro de una valva. Escala: 1jum.

35

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

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36

Especies chilenas de Nitaschia: PATRICIO RIVERA R.

Fics. 71-81. Nitzschia delicatissima. Fics. 71-73, LM. Fics. 74-76, SEM. Fics. 77-81, TEM. Escala: 10um, excepto cuando

se indica otro valor. Fic. 71. Sobreposición de los extremos valvares alrededor de 1/8 del largo total de la célula. 41”48'S -

73%05'W, 5.8.1977, DIAT-CONC M-1264. Fics. 72-73. Fíbulas apenas visibles en el microscopio fotónico, las dos

centrales más distanciadas entre sí (flecha). 23%49'S - 70%53'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M-1070. Frias. 74-75. Detalle de

valvas; nódulo central presente (flechas). 23"49'S - 70%53'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M-1070. Fic. 76. Detalle del

centro valvar. Escala: lum. 18%20'S - 70%35'W, 16.8.1972, DIAT-CONC M-761. Fics. 77-78. Valvas linear-lanceoladas

con extremos redondeados. Nódulo central señalado con flechas. (Fic. 77: 23"49'S - 70%48'W, 24.8.1972. DIAT-CONC

M-1071. Fic. 78: 41%48'S - 73%05'W, 5.8.1977, DIAT-CONC M-1264). Fic. 79. 23"49'S - 70*53"W, 24.8.1972, DIAT-

CONC M-1070. Fics. 80-81. Detalle de extremo y centro valvar. Dos corridas de poroides en la membrana intercostal.

Escala: luum. 23%49'S - 70%53'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M-1070.

Fics. 82-87. Nitaschia inflatula. Fics. 82-84, LM. Fics. 85-87, SEM. Escala: 10m. Fic. 82. En el microscopio fotónico las

fíbulas son más evidentes que las costillas transapicales, las dos centrales están más distanciadas entre sí (flecha). 2349'S -

70%53'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M-1070. Fic. 83. Células unidas por sobreposición de sus extremos. 23”49'S -

70%53'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M-1070. Fic. 84. Fíbulas y nódulo central (flecha). DIAT-CONC M-1070. Fic. 85.

Valva. 23%49'S - 71916'W, 24.8.1972, DIAT-CONC M-1069. Fic. 86. Valva. DIAT-CONC M-1069. Fic. 87. Detalle de

una valva. 33736'S - 78%02'W, 5.9.1972, DIAT-CONC M-1201.

37

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

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Especies chilenas de Nitaschia: PATRICIO RIVERA R.

Fics. 88-90. Nitzschia inflatula. TEM. Escala: 10m, excepto cuando se indica otro valor. Fic. 88. Detalle de extremo y

centro valvar. 23%49'S - 70%53'W, 24.8.1972. DIAT-CONC M-1070. Fic. 89. Valva. 23%49'S - 71*16'W, 24.8.1972,

DIAT-CONC M-1069. Fic. 90. Centro de una valva. Escala: l]um. DIAT-CONC M-1070.

Fics. 91-102. Nitzschia pseudodelicatissima. Fics. 91, 94-96, LM. Fics. 92-93, 97, SEM. Fics. 98-102, TEM. Escala: 10m,

excepto cuando se indica otro valor. FiG. 91. Células unidas por sobreposición de los extremos valvares. Bahía de

Valparaíso, 33%02'S - 71*737'W, 10.3.1964, Avaria 1965, DIAT-CONC M-1119. Fic. 92. Valvas lineares o sublineares;

nódulo central evidente (flecha). 33%02'S - 71%37'W, 3.2.1966, DIAT-CONC M-1118. Fic. 93. 41%48'S - 73%05'W,

24.11.1976, DIAT-CONC M-1258. Fic.94. Sólo las fíbulas son evidentes en el microscopio fotónico, las dos centrales más

separadas entre sí (flecha). 3637'S - 72257'W, 7.11.1937, Krasske 1941, Kassel N” 4134/4135, DIAT-CONC M-1449.

Fics. 95-96. 36%43'S - 73207'W, 17.10.1968, Rivera 1969, DIAT-CONC M-865. Fic. 97. Extremo y centro de una valva.

36%43'S - 73207'W, 13.5.1965, Rivera 1969, DIAT-CONC M-598. FiG. 98. 50%22'S - 7519'W, 18.11.1978, DIAT-CONC

M-1391. Fics. 99-102. Detalle de extremo, parte anterior y centro de una valva. Escala: Im. 53%13'S - 73214'W,

16.12.1975, DIAT-CONC M-907.

39

Gayana Bot. 42 (3-4); 41-45, 1985

ISSN 0016-5301

NEW RECORDS FOR THE FLORA OF CHILE BASED

ON AN EXPEDITION TO THE SIERRA DE LOS BAGUALES,

ULTIMA ESPERANZA, PATAGONIA

NUEVOS HALLAZGOS PARA LA FLORA DE CHILE BASADOS

EN UNA EXPEDICION A LA SIERRA DE LOS BAGUALES,

ULTIMA ESPERANZA, PATAGONIA

Mary T. Kalin Arroyo', Clodomiro Marticorena*, Orlando Dollenz?

ABSTRACT

Nine new records (8 species and 1 genus) are given for the

Chilean flora based on examination of material collected

during a two and a half month expedition to the Sierra de

los Baguales, Ultima Esperanza, XII Región, Chile (5095,

72W). The previously uncited taxa are: Adesmia burkarta

Correa, A. suffocata Hook. f., Benthamiella lanata Soriano,

Luzula correae Barros, Nassauvia maeviae Cabr., Onuns

hatcheriana (Gilg) Gilg et Muschl., Philipprella patagonica

Speg. (new genus for Chile), Senecio beaufilsu O.K. and S.

culcitenellus Cabr. A significant southern range extension

is given for A. burkarta, while B. lanata and N. maeviae are

shown to be new examples of species with trans -

Patagonian disjunct distributions.

RESUMEN

Se da a conocer nueve nuevos hallazgos (8 especies y 1

género) para la flora chilena basados en el estudio de

material colectado en una expedición de dos meses y

medio de duración a la Sierra de los Baguales, Ultima

Esperanza, XII Región, Patagonia, Chile (50%S, 722W).

Los taxa previamente no citados son: Adesmiía burkarta

Correa, A. suffocata Hook. f., Benthamiella lanata Soriano,

Luzula correae Barros, Nassauvia maeviae Cabr., Onuns hat-

cheriana (Gilg) Gilg et Muschl., Philappiella patagonica Speg.

(nuevo género para Chile), Senecio beaufisi O.K. y S.

culcitenellus Cabr. Se extiende notablemente el límite sur

de la distribución de A. burkartú y se demuestra que B.

lanata y N. maeviae son nuevos ejemplos de especies con

una distribución transpatagónica.

KEYWORDS: Flora, new records, Chilean Patagonia, Phytogeography, Sierra de los Baguales.

INTRODUCTION

The Sierra de los Baguales, situated on the

border of Argentina and Chile, to the east of

the Cordillera de los Andes at latitude 50%

(Fig. 1), constitutes a highly unusual and

botanically unique area within Chilean Pata-

gonia. With little evidence for the intensive

'Departamento de Biología, Facultad de Ciencias,

Universidad de Chile, Casilla 653, Santiago, Chile.

“Departamento de Botánica, Facultad de Ciencias

Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de

Concepción, Casilla 2407, Concepción, Chile.

“Instituto de la Patagonia, Casilla 102-D, Punta Are-

nas, Chile.

41

glaciations experienced by the Andes at the

same latitude, and a present day arid climate,

the treeless Baguales exhibit a far richer high

mountain flora than that encountered above

treeline on the western Patagonian cordille-

ras. Phytogeographic relationships, more-

over, clearly lie to the north and east with the

high mountains and steppe communities of

Santa Cruz and Chubut provinces, Argentina.

Over the period 1 December, 1984. to 19 Fe-

bruary, 1985 an intensive survey of the high

andean flora was conducted as part of studies

on the reproductive biology of the Baguales

flora and its vegetation. The main areas stu-

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

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FiG 1. Location of areas explored on 1984-85 expedition to the Sierra de los Baguales, Patagonia, Chile.

died were the dry slopes and high mountain

bogs (vegas or mallines) from 600 m up to to

the upper vegetation limit at 1400 m between

the Rio Baguales valley and the high unnamed

range (2045 m) leading to the north of Cerro

Santa Lucía (1980 m) (region of the junction

of the Rios Bandurria and Baguales), and the

Rio Baguales riverbed between 500-700 m

(50%44'S, 72%20'W). Additional collections

were made on the western side of the Baguales

valley on the high slopes (800-1100 m) below

Cerro Donoso (1450 m) 50%44'S - 72%31'W).

Examination of this material has revealed the

existence of 9 species and one genus, hitherto

42

uncited for the Chilean flora. Specimens are

deposited in the herbaria of the Facultad de

Ciencias, Universidad de Chile, Santiago

(Fcuc!), Universidad de Concepción (CONC)

and Instituto de la Patagonia (HIP).

CARYOPHYLLACEAE

Philippiella patagonica Speg., Rev. Fac.

Agron. Veterin. La Plata 30-31: 566. 1897;

Pedersen in Correa, Fl. Patag. 4b: 223;

fig. 171. 1984.

'Fcuc: provisional code for collections housed at the

Facultad de Ciencias, Universidad de Chile, Santiago.

New records for the flora of Patagonia: KALIN ARROYO, MARTICORENA AND DOLLENZ

Philippiella patagonica grows on dry, exposed

slopes along with Nardophyllum bryoides (Lam.)

Cabr. and Perezia recurvata (Vahl) Less. This

species is evidently very scarce in the area, as

only one plant was seen in the entire period

spent in the region. The material cited adds

another genus to the Chilean flora. Previously

known only from central and eastern parts of

Santa Cruz province, Argentina. Boelcke et al.

2678 (T.B.P.A.) collected it immediately

across the Argentina border in the Rio

Vizcachas valley.

XII Recion: north of Cerro Santa Lucia, east

side of the Rio Baguales valley, 800 m; flowers

green, inconspicuous, 1.X11.1984, M.T.K.

Arroyo, O. Dollenz and A. Landero 841021

(Fcuc; CONC).

COMPOSITAE

Nassauvia maeviae Cabr., Darwiniana 24:

368, fig. 27. 1982.

This rare, recently described species has been

collected previously only from the type local-

ity at Laguna La Leona, Depto. Gúer Aike, in

the extreme SE Atlantic portion of Santa Cruz

province, Argentina. Our material extends 1ts

range over 250 km, and reveals that it has a

disjunct distribution across Patagonia.

In the Sierra de los Baguales Nassauvia maeviae

is associated with Senecio patagonicus H. et A.,

Perezia recurvata (Vahl) Less. and Nardophyllum

bryoides (Lam.) Cabr. Another very rare

species in the area, as again, only one large

cushion was seen in a period of two and a half

months field work. Our material differs from

the original description in that the capitula

contain 5 flowers instead of 3. Further collec-

ting might reveal that the Chilean material

warrants subspecific recognition.

XII Recion: dry slopes above the Baguales

river valley, east side, 700 m, 15.1.1984,

M.T.K. Arroyo 841140 (Fcuc; CONC; HIP).

Senecio beaufilsii O.K., Rev. Gen. Pl. 3(2):

171. 1898; Cabrera in Correa, Fl. Patag. 7:

195, fig. 184. 1971.

43

This species in restricted to humid depres-

sions where it grows typically intermixed with

Festuca gracillima Hook. f. tussocks. Previously

recorded from Neuquén to Santa Cruz pro-

vince, Argentina.

XII Recion: north of Cerro Santa Lucia, east

side of the Rio Baguales river valley, 900 m,

stems red, 6.1.1985, M.T.K. Arroyo 85062

(Fcuc; CONC; HIP); 7.1.1985, M.T.K. Arroyo

85021 (Fcuc).

Senecio culcitenellus Cuatr., Fieldiana, Bot.

27(1): 43. 1950; Cabrera, Revista Mus. La Pla-

ta (N.S.), Secc. Bot. 10: 4, fig. 1. 1966; Cabrera

in Correa, Fl. Patag. 7: 188, fig. 167. 1971.

Senecio culcitenellus belongs to section

Brachypappus (Sch. Bip) B. et H. It is closely

related to $. magellanicus H. et A., from which

it may be distinguished by its sessile to shortly

pedunculate capitula, and with which it

overlaps in range. In the Sierra de los

Baguales these two species are well

differentiated by habitat. Senecio magellanicus,

a very common species, grows on dry slopes

up to approximately 1000 m. Senecio

culcitenellus, im contrast, is restricted to higher,

loose talus areas, where it is accompanied by

such subnival species as Moschopsis rosulata

(N.E. Br.) Dusén and Nassauvia pygmaea

(Cass.) Hook. f. Previously known only from

Santa Cruz province, Argentina.

XII Recion: west side of the Rio Baguales

valley, on slopes leading to Cerro Donoso, ca.

1100 m, on scree, 4.X11.1984, M.T.K. Arroyo

841086A (CONC).

CRUCIFERAE

Onuris hatcheriana (Gilg) Gilg et Muschl.,

Bot. Jahrb. Syst. 42(5): 468. 1909; O.E.

Schulz, Pflanzenr. 86: 202. 1924; Boelcke in

Correa, Fl. Patag. 4b: 487, fig. 365. 1984; Pa-

rodiana 3(1): 55. 1984.

Syn. Draba hatcheriana Gilg in Macloskie, Rep.

Princeton Univ. Exped. Patag., Bot. 8: 444,

pl. 18b. 1905.

Onuris hatcheriana” is characterized by its

2Thanks are extended to Ricardo Mernez who first

located O. hatcheriana.

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

dense, low growing cushion habit, and its

habitat in rock fissures around 1100-1200 m,

close to the upper limit of the vegetation. The

presence of this species in Chile is not

surprising since Boelcke et al. (T.B.P.A. 2927;

cited in Del Pero Martínez, 1984) collected it

in Argentina, immediately to the east at Ea.

Las Vizcachas, Gúer Aike, Santa Cruz pro-

vince.

XII ReGion: north of Cerro Santa Lucia, east

side of the Rio Baguales valley, 1250 m; com-

pact cushions with abundant white flowers, in

rock crevices, 6.1.1985, M.T.K. Arroyo 85060

(Fcuc; CONC; HIP).

JUNCACEAE

Luzula correae Barros in Correa, Fl. Patag. 2:

118, fig. 107. 1969.

This species of Luzula is restricted to high

andean bogs between 500-1000 m. The most

conspicuous characteristic Of L. correae 15 1ts

obtuse, subcallose leaf tips. Additionally the

bracts and tepals are non-ciliate. Our material

differs from the original description in that

the leaves are less densely ciliate to sub-

glabrous. Previously cited for Lago Argenti-

na, Santa Cruz province, Argentina (type loca-

lity).

XII Recion: high andean bogs on slopes

north of Cerro Santa Lucía, east side of the

Baguales river valley, 900 m, 15.1.1985, M.T.

K. Arroyo 85203 (Fcuc); 15.1.1985, 1000 m,

M.T.K. Arroyo 85211 (Fcuc; CONC, HIP).

PAPILIONACEAE

Adesmia burkartii Correa, Darwiniana 23(1):

113, fig. 2. 1981 Burkart in Correa, Fl. Patag.

4b: 113, fig. 482. 1984.

Adesmia burkartil, a very rare species, previous-

ly only know from the type locality in Santa

Cruz province, Argentina in the Lago Buenos

Aires, area, was found growing on dry slopes

along with Oxalis enneaphylla Cav., Oreopolus

glacialis (P. et E.) Ricardi var. glacialis and Ades-

mia villosa Hook. f. Our collection extends the

known range of O. burkartii by over 400 km to

the south.

44

XII Recion: dry slopes north of Cerro Santa

Lucía, east side of the Baguales Valley, 900 m,

uncommon, 15.XI11.1984, M.T.K. Arroyo

841128 (Fcuc; CONC).

Adesmia suffocata Hook. f., Fl. Antarct. 2:

256. 1845; Burkart, Darwiniana 3: 340. 1939;

Darwiniana 12(3): 318, fig. 3. 1962; Burkart

in Correa, Fl. Patag. 4b: 139, fig. 508. 1984.

A common plant appearing on dry sandy soils

along with Senecio patagonicus H. et A. and

Lathyrus magellanicus Lam. var. glaucescens

Speg. This species, which may be easily

confused with the larger Adesmia lotoides

Hook. f., may be distinguished from the latter

by its more densely sericeous pubescence, and

its hairs which are smooth and never tubercu-

late, and rarely malpighiaceous. Additionally,

the flowers of A. suffocata are smaller and al-

most sessile hardly exceeding the leaves, and

arranged in 1-3 flowered corymbs. The

Boelcke et al. 2550 (T.B.P.A.) collection from

Ea. Las Vizcachas, Santa Cruz province,

Argentina accords well with the Chilean

material. The material cited differs slightly

from that illustrated in Burkart (1962) in

having more acute stipules, not rounded at

the apex.

XII ReGiox: riverbed of Rio Baguales, 550 m,

11.X11.1984, M.T.K. Arroyo, O. Dollenz 8 A.

Landero 841085 (Fcuc; CONC), 1.1.1985;

M.T.K. Arroyo 841142 (Fcuc; CONC).

SOLANACEAE

Benthamiella lanata Soriano, Darwiniana 8:

249, fig. 54-G, 9G, 1948; Arroyo, Bot. Not.

133: 74, fig. 4G-I, 1980.

Benthamiella lanata occurs very sporadically on

dry slopes along with B. azorella (Skottsb.)

Soriano, Senecio patagonicus H. et A. and

Hamadryas delphinú Phil. ex Reiche at around

1000 m. This species is the fourth representa-

tive of the genus for Chile. Benthamiella lanata,

like B. azorella is a hard cushion plant with

strongly imbricate, incurved leaves, which re-

main on the stems for many years. Known

only from the type locality in Chubut

province, camino de Comodoro Rivadavia a

New records for the flora of Patagonia: KaLIN ARROYO, MARTICORENA AND DOLLENZ

Las Heras (Soriano 2066), our collection known from Chilean territory may be

points to another trans-Patagonian disjunct separated according to the following key

distribution. The four species of Benthamiella taken directly from Arroyo (1980):

1 Stamens 2 or occasionally 1, leaves 1.5-2.5. mm long .............. B. azorella (Skottsb.) Soriano

1 Stamens 5, leaves longer than 5 mm

2 Leaves and calyx teeth with lanate MarginS ......oooocccnncnnnnonncnonccnonencnnnnoss B. lanata Soriano

2 Leaves and calyx teeth with ciliate margins

3 Leavesand calyx teeth truncate and glandular at apex;

Misments clearly inequal length rincon albina lead es ic B. patagonica Speg.

3 Leaves and calyx teeth acute and glabrous or with

Aparse halrs at apex; filaments equal to;sabequal conca arta oros to canta toca ironico

A A A B. nordenskjoldi Dusén ex N.E. Brown

XII Recion: dry slopes north of Cerro Santa Estancia La Cumbre, for providing accommo-

Lucía, above Baguales river valley, 1000 m, dation and logistic support during the field

21.1.1985, M.T.K. Arroyo 85101 (Fcuc; season. Assistance in the field by Oriana Za-

CONO). mora is much appreciated. Finally, Professor

David Moore, University of Reading, who

alerted us to the Baguales region, is thanked.

ACKNOWLEDGEMENTS

This work was conducted while the first

author held a John Simon Guggenheim Me-

morial Fellowship. It was supported by a Com- LITERATURE CITED

mittee for Research and Exploration grant,

National Geographic Society, USA, to whom ARROYO, S.C. 1980. The genus Benthamiella (Sola-

we are most grateful. We wish to thank Sr. nascas) Bor Nor

Edmundo Pisano, Director, Instituto de la Bunkarr, A, 1962. Contribació

nero Adesmia (Leguminosae). Darwiniana 12(3):

Patagonia, Punta Arenas, who made the 309-364

Institute's facilities available during our DeL Pero MarTINEZ, M.A. 1984. Flavonoides en

expedition. We pe also extremely grateful to Onuris: diversidad de glicósidos y quimiotaxono-

the Vidal family and Sr. Hernán Rodaz, mía. Parodiana 3(1): 83-102.

45

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Gayana Bot. 42 (3-4); 47-49, 1985

ISSN 0016-5301

GROENBLADIA (DESMIDIACEAE): A FIRST RECORD

OF OCCURRENCE IN CHILE*

GROENBLADIA (DESMIDIACEAE): PRIMER REGISTRO PARA CHILE

Oscar O. Parra! y Carlos E. de M. Bicudo”

ABSTRACT

The first record of occurrence in Chile of the desmid

genus Groenbladia (Desmidiaceae, Zygnemaphyceae).

Groenbladia neglecta (Raciborski) Teiling was collected

from the plankton of a pond - Laguna La Posada (36*56'S

-73"10'W) - in the neighbourhood of the city of

Concepción, Concepción Province, southern Chile.

RESUMEN

Se da a conocer por primera vez la presencia del género

Groenbladia (Desmidiaceae, Zygnemaphyceae) para Chile.

Groenbladia neglecta (Raciborski) Teiling fue colectada en

el plancton de la Laguna La Posada (36"56'S - 73%10'W),

en los alrededores de la ciudad de Concepción, Provincia

de Concepción, Chile.

KEYWORDS: Groenbladia, G. neglecta, Desmidiaceae, Zygnemaphyceae, first record, Chile.

INTRODUCTION

Samples of freshwater algae were collected in

October 1982 from several localities in the

neighbourhood of the town of Concepción.

One of these samples contained a small (25

individuals) but considerable population of a

desmid, which was identified as Groenbladia

Teiling, a genus never reported for Chile, and

as G. neglecta (Raciborski) Teiling.

The sample studied was collected from

Laguna La Posada (3656'S - 73*10'"W), a

pond located approximately 17 km southern

of Concepción.

Groenbladia neglecta (Raciborski) Teiling - Fig.

1-3

Cells medium-sized, 28-30 x 10-11um,

*Proyecto 20.32.06 de la Dirección de Investigación

Científica de la Universidad de Concepción.

'Departamento de Botánica, Facultad de Ciencias

Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de

Concepción, Casilla 2407, Concepción, Chile.

*Seccáo de Ficologia, Instituto de Botánica. Caixa pos-

tal, 4005, 01000 - Sáo Paulo, SP, Brasil.

47

subcylindrical, 2.7-2.8 times as long as broad,

very faintly constricted at the middle, sinus a

very shallow notch with a very slight inflation

on either side of it; semicells with the lateral

margins straight and parallel at their greatest

extent up to the apex, sometimes regularly of

irregularly but slightly concave near the

middle, the apices broad and truncate;

semicells in vertical view circular; chloroplast

1 per semicell, axile, laminate, each with a

single, central pyrenoid.

The material observed was dominated by

Synura uvella Ehrenberg, Dinobryon divergens

Imhof, and Mallomonas spp. It was also rich in

species of Staurastrum and Staurodesmus. Other

filamentous desmids met with in the sample

were Bambusina brebissona Kútzing ex Kútzing

var. brebissonú f. brebissona, Desmdium swartzn

(C. Agardh) C. Agardh ex Ralfs var. swartzi f.

swartzú, and D. grevilla (Kútzing) De Bary var.

grevillar.

Dellarrosa et al. (1976) and Parra et al.

(1981) have defined Laguna la Posada as an

oligotrophic lake.

The genus Groenbladia was separated from

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

Figura 1

Figura 3

FiG. 1-3. Groenbladia neglecta (Rac.) Teil. Morphological variation in the population.

Hyalotheca on the sole basis of the shape of the

chloroplast. According to Teiling (1952: 275),

the axile, laminate chloroplast, often incised at

the middle, placed H. neglecta Raciborski in an

isolated position without any connection to

Hyalotheca or other known placoderm

desmids. The genus presently comprises 5

48

species, 3 of which were formerly classified

among the Hyalothecas, all of relatively rare

occurrence (Croasdale, Bicudo € Prescott,

1984), in spite of the genus having already

been recorded for all five continents.

Groenbladia neglecta (Raciborski) Teiling 1s a

somewhat variable species. As formerly

First record of Groenbladia in Chile: PARRA AND Bicupo

proposed by Raciborski (1895: 30, pl. 2, fig. The material we examined showed

2-3), the cells are subcylindrical, broasdest im considerable variation in cell shape, with the

the midregion on either side of the isthmus, majority of the cells in the filament broadest in

the sinus a very slight notch. However, West, the midregion due to the presence of a short,

West 8c Carter (1923: pl. 163, fig. 2) gives the conspicuous inflation. However, such a me-

illustration of an individual with the lateral dian inflation was not universal in the same

margins of semicells very faintly but conspi- filament. Furthermore, in several cells there

cuously concave at the middle. And West, was a broad and shallow excavation near the

West £ Carter (1923: pl. 163, fig. 1) shows the middle on each side. The variation above is

cells with lateral margins regularly but slightly about the same as that already illustrated in

concave near the middle, ¿.e. widely excavate West, West 8 Carter (1923: pl. 163, fig. 1-2),

with typically shallow sinus. The latter very which was based on material from the United

much resembles individuals of G. undulata Kingdom (England, Wales, Scotland, and

(Nordstedt) Fórster var. undulata, from which Ireland).

it differs at once in the cell measurements,

much greater in G. neglecta (Raciborski) Tei- The present five species of the genus can be

ling. identified according to the following:

Nel mot excavate in the midregion, sinús absent..... o... G. attenuata

1. Cells with some form of excavation in the midregion, sinus a shallow depression or a very sligh

notch.

2. Cells widely excavate in the midregion, with, typically, a shallow sinus ..... G. undulata

2. Cells abruptly or slightly swollen at midregion, sinus a very slight notch.

3. Semicells abruptly swollen on each side of the isthmus ................... G. inflata

3. Semicells only slightly swollen in midregion.

4. Cells 1.3-2.5 times as long as broad, chloroplasts with 1 or 2 pyrenoids G. taylorú

4. Cells 2.5-3 times as long as broad, chloroplasts with as single pyrenoid G. neglecta

ACKNOWLEDGEMENTS La Posada y Lo Méndez. II. Aspectos cuantitati-

vos del fitoplancton invernal y su relación con

The authors are very much indebted to Mr. algunas características físicas y químicas del am-

Alasdair G. Burman, of the Instituto de biente. Bol. Soc. Biol. Concepción 50: 87-101.

Botánica, Sáo Paulo, Brazil for improvement Parra, O.O., UGarTE E. y DELLARROSA V. 1981.

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167.

49

A e o > MN j

j A Ph» a OE Rh Mn do A o M1 yd 00

.

DMI bs

Gayana, Bot. 42 (3-4); 51-57, 1985

ISSN 0016-5301

NUEVO REGISTRO DE THALASSIOSIRA WEISSFLOGIT (GRUNOW)

FRYXELL Y HASLE (BACILLARIOPHYCEAE) PARA CHILE*

A NEW RECORD OF THALASSIOSIRA WEISSFLOGII (GRUNOW)

FRYXELL AND HASLE (BACILLARIOPHYCEAE) FROM CHILE

P. Rivera R.**

RESUMEN

Se amplía la distribución en Chile de Thalassiosira weissflo-

gú (Grunow) Fryxell £ Hasle con el hallazgo de numero-

sos ejemplares en muestras procedentes de la Caleta El

Morro (Talcahuano), Bahía de Concepción (36%42'S -

7302'W).

Sobre la base de observaciones realizadas mediante

microscopia fotónica y electrónica se describe algunas

variaciones de la morfología de los frústulos y, especial-

mente, la estructura del cingulum.

El material estudiado se encuentra depositado en la

Colección Diatomológica de la Universidad de Concep-

ción (DIAT-CONC), Chile.

ABSTRACT

The distribution of Thalassiosira weissflogii (Grunow)

Fryxell 8 Hasle in Chile has been extended with the

finding of the species in Caleta El Morro (Talcahuano),

Bahía de Concepción (36%42'S - 73%02'W).

Light and electron microscopy techniques allowed us

to describe variations in the frustules and specially in the

structure of the cingulum.

The material examined has been deposited in the

Diatom Collection at the Botany Department

(DIAT-CONC), University of Concepción, Chile.

KEYWORDS: Thalassiosira weissflogi2, Morphology, Distribution, Chile.

INTRODUCCION

Thalasstosira weissflogii fue la primera especie

del género descrita para las aguas dulces

(Hustedt, 1926 como 7. fluviatilis), y su morfo-

logía general ha sido conocida gracias a las

investigaciones realizadas principalmente por

Hasle (1962 y 1978), Helmcke y Krieger

(1954), Geissler et al. (1963), Gerloff y Helm-

cke (1974) y Fryxell y Hasle (1977).

La especie se presenta también en las aguas

salobres y su distribución parece ser tan am-

plia que se la considera como cosmopolita,ha-

biendo sido citada para Alemania, Inglaterra,

*Proyecto 203207, Dirección de Investigación, Uni-

versidad de Concepción, Chile.

**Departamento de Botánica, Casilla 2407, Aparta-

do 10, Universidad de Concepción, Chile.

51

Holanda, Noruega, Mar Caspio, Estados Uni-

dos, Japón, Sudáfrica, etc. Sin embargo, ha

sido señalada en el Continente Sudamericano

exclusivamente para Venezuela por Hustedt

(1956) y para Chile por Rivera (1981) que al

hacer la revisión de los taxa del género Thalas-

stosira presentes en la costa sudoriental del

Océano Pacífico, registra el taxon en un mate-

rial procedente del Río El Coipo, en la XII

Región (55*10'S - 6845'"W).

Sobre la base del material estudiado en esa

oportunidad Rivera reconoce una cierta varia-

bilidad de las características morfológicas del

frústulo y aunque la especie era relativamente

abundante, no logra visualizar con claridad las

características de los elementos que consti-

tuyen la cintura. Fryxell, Hubbard y Villarreal

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

publican en 1981 sus observaciones sobre la

estructura del cingulum de diversas especies

de Thalassiostra, entre ellas la de T. werssflogr.

El análisis de muestras de fitoplancton re-

colectadas en la Caleta El Morro (Bahía de

Concepción, Chile), conteniendo un gran nú-

mero de frústulos de la especie, ha permitido

no solamente conocer con mayor exactitud su

distribución a lo largo del litoral chileno sino

que también ha hecho posible reestudiar sus

diferentes características, particularmente la

estructura del cingulum. Esto es importante,

pues Fryxell et al. (loc. cit.) demostraron que

las características de las diferentes bandas del

epicingulum son tan estables como las que se

encuentran en las valvas, pudiendo ser utiliza-

das para definir en mejor forma a las especies.

La información obtenida del material chileno

estudiado complementa por lo tanto la entre-

gada por Fryxell y colaboradores.

MATERIALES Y METODOS

El material estudiado, depositado en la Colec-

ción Diatomológica del Departamento de Bo-

tánica de la Universidad de Concepción, Chile

(DIAT-CONC), proviene de la Caleta El Mo-

rro, Talcahuano, en la Bahía de Concepción

(3642'S-73%02'W). Las muestras fueron re-

colectadas el 22 de agosto y el 11 de diciembre

de 1965, mediante red de plancton de 70um

de trama y conservadas en formalina neutra al

2%. La materia orgánica de los frústulos fue

eliminada según el método de Hasle y Fryxell

(1970). Cuando fue necesario se utilizó el mé-

todo de secado mediante punto crítico (An-

derson, 1951). Las preparaciones fueron ob-

servadas en un microscopio fotónico Zeiss

Standard RA provisto con condensador de

contraste de fases y en los microscopios elec-

trónicos de transmisión y de barrido pertene-

cientes al Laboratorio de Microscopía Electró-

nica de la Universidad de Concepción (Philips

EM 200 y ETEC Autoscan U-1, respectiva-

mente). La terminología empleada correspon-

de a la sugerida en Anonymous (1975) y por

Ross et al. (1979).

OBSERVACIONES

Thalassiosira weissflogii (Grunow) Fryxell et

Hasle

Figs. 1-9

52

Fryxell, G.A. et G.R. Hasle, p. 68, Figs. 1-15,

1977. Rivera, P., p. 130, Láms. 63-65, 1981.

Basónimo: Micropodiscus weissflogi Grunow in

Van Heurck, p. 210, 1880-1885; p. 492, Fig.

231, 1896.

Sinonimia: Thalassiosira fluviatilis Hustedt, p.

565, Figs. 1-4, 1926.

MATERIAL ESTUDIADO:

36%42'S-73%02'W. Caleta El Morro, Talcahua-

no, 22.8.1965 (DIAT-CONC M - 1550, DIAT-

CONC 89 y 90) y 11.12.1965 (DIAT-CONC M

- 1055, DIAT-CONC 178, 179 y 180).

Al igual que lo observado por Rivera (1981)

en el material proveniente del Río El Coipo,

las dos muestras estudiadas contenían sola-

mente frústulos aislados, de contorno rectan-

gular o cuadrangular en vista conectival (Figs.

1-2).

El epicingulum está formado por una val-

vocópula y cinco pleuras, todas de aspecto de-

licado, carentes de septos, y provistas de un

área hialiana en ambos márgenes (Fig. 3). Ca-

da uno de estos elementos es abierto; en ban-

das contiguas la abertura se encuentra en el

lado opuesto. Las pleuras están provistas de

una lígula y de una pequeña antilígula, ambas

situadas en posición contraria a la parte abier-

ta. Mirando un lado de la célula, las diferentes

lígulas y extremos de las bandas se ordenan en

forma siniestral, es decir, forman una espiral

hacia la izquierda (Figs. 3, 7).

La valvocópula es la banda más ancha del

cingulum y está ornamentada con líneas obli-

cuas de poros, 6-8 en 1 ¡um en el lado advalvar,

disminuyendo gradualmente en tamaño hacia

el lado abvalvar (10-13 en 1 um) (Fig 5).

Las cinco pleuras siguientes presentan esta

misma estructura, pero los poros son leve-

mente más pequeños (9-10 en 1 um en el lado

advalvar y 12-13 en 1 ¡um en el lado abvalvar)

(Figs. 4, 6). Estas pleuras se diferencian de la

valvocópula por poseer los márgenes hialinos

más anchos. La última pleura es la más angos-

ta de todas.

La estructura de las valvas del material chi-

leno fue descrita por Rivera (1981); la gran

cantidad de frústulos ahora estudiados pone

nuevamente en evidencia la variabilidad de

algunas de sus características. El diámetro va-

rió entre 13 y 22 um. Las fultoportulae margh

nales oscilaron entre 7 y 13 en 10 pm, general-

Nuevo registro de T. Weissflogi para Chile: RIveRA

1e¡n33.111

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IPETedTE

53

Gayana, Bot. 42 (3-4), 1985

mente 10-12. Otras fultoportulae se disponen

cerca del centro de la valva (Fig. 8), formando

un círculo cerrado (Fig. 1), un círculo abierto

(Fig. 2) o en forma más o menos irregular (Fig.

9). El número total de estos procesos en cada

valva varió entre 3 y 11. El número de líneas

de aréolas sobre la valva fue de 30-40 en

10um.

Una característica no señalada anterior-

mente por Rivera (loc. cit.) es la presencia de

una antilígula situada en el margen valvar,

siempre a la izquierda del proceso labiado.

Aunque a veces difícil de observar, bajo deter-

minados ángulos es muy evidente (Fig. 7).

DISCUSION

Las características del material chileno anali-

zado reafirman las observaciones de Fryxell y

Hasle (1977) sobre la morfología general de la

especie y permiten ampliar el conocimiento

sobre la estructura del cingulum en particular.

Esta es diferente a la que presentan otras espe-

cies del mismo género (Fryxell et al. 1981): la

valvocópula carece de septos (como T. scotra) y

de una línea de grandes poros, tampoco se

diferencia una cópula con una sola corrida de

poros y las pleuras no son hialinas. El ordena-

miento de las aberturas de las bandas no es

dextral ni en línea, sino siniestral. Un epicin-

gulum “maduro” está formado por 6 bandas:

una valvocópula y 5 pleuras; igual cantidad

fue encontrada por Fryxell et al., (loc. cit.).

Según estos autores las perforaciones pre-

sentes en la valvocópula están provistas de una

cribra, no así aquellas de las pleuras. Su gra-

dual disminución de tamaño en sentido abval-

var no había sido mencionada y, aunque gene-

ralmente poco notoria, fue evidente en algu-

nas bandas.

En la Tabla 1 se ha reunido la información

entregada por algunos autores sobre la espe-

cie. Su análisis revela claramente la variación

del taxon, especialmente respecto a la disposi-

ción y número de las fultoportulae centrales y

al número de “aréolas” y de fultoportulae

marginales.

Las diferencias de T. weissflogiz con otras

especies afines ha sido discutida por Cassie et

Dempsey (1980) y por Rivera (1981).

No existe una relación clara entre el núme-

ro de fultoportulae centrales y el diámetro de

54

las valvas, como lo afirman Hasle (1962) y

Rivera (1981). Más de 300 valvas fueron medi-

das y, aunque existe la tendencia de que a

mayor diámetro hay mayor número de proce-

sos, muchas veces las valvas más grandes (22

pm) presentaron el mismo número de proce-

sos que las más pequeñas (13 pm).

Las escasas citas de T. weissflogú para Suda-

mérica no indican necesariamente que la espe-

cie tenga allí una reducida distribución. Su

hallazgo, primero en el extremo sur de Chile y

ahora en la zona central, está demostrando

que un estudio cuidadoso de las muestras pue-

de revelar la presencia de ciertos taxa, que por

su delicada estructura y reducido tamaño pa-

san a menudo desapercibidos en los análisis.

AGRADECIMIENTOS

El autor expresa su sincero reconocimiento al

personal del Laboratorio de Microscopía Elec-

trónica de la Universidad de Concepción por

la cooperación otorgada en la realización de

esta investigación. Se agradece también a la

Sra. Edith Montero por su excelente asistencia

técnica.

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Nuevo registro de 7. Weissflogí para Chile: RIveRA

EXPLICACION DE LAS FIGURAS

Fics. 1-9. Thalassiosira weissflogí. Figs. 1-7, 9 SEM. Fig. 8 TEM. Escala: l um, excepto cuando se indica otro valor. Fic. 1.

Frústulo completo. Fultoportulae forman un círculo cerrado cerca del centro de la valva. Escala: 10m. Fic. 2. Frústulo

completo. Fultoportulae centrales dispuestas en un círculo abierto. Escala: 10m. Fic. 3. Detalle de un epicingulum

mostrando la valvocópula (V) y cinco pleuras (p). Note ordenación siniestral de las lígulas (L). Fic. 4. Valvocópula y tres

pleuras. Fic. 5. Detalle de valvocópula y pleuras. Fic. 6. Valvocópula y cuatro pleuras. Fic. 7. Antilígula (flecha) situada en

el margen valvar. Note ordenación siniestral de las lígulas (L). Fic. 8. Parte central de valva mostrando aréolas y

fultoportulae. Fic. 9. Vista interior de valva. Fultoportulae centrales dispuestas en forma irregular. Escala: 10m.

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16.

ET.

18.

15.

20.

21.

REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

. La revista Gayana dedicada al distinguido naturalista francés Claudio Gay, es el órgano oficial de la

Editorial de la Universidad de Concepción, Chile, para la publicación de resultados de investigaciones

originales en el área de las Ciencias Naturales. Está compuesta de las series Botánica, Zoología y

Miscelánea.

Las dos primeras aparecen en la forma de un volumen anual compuesto por cuatro números; Gayana

Miscelánea es aperiódica.

. Gayana recibe trabajos realizados por académicos de la Universidad de Concepción y ocasionalmente

los de otros investigadores nacionales o extranjeros de presti 10, elaborados según las normas del

1) p