FACUEÉETAD DE GTENCTA'S: BTOLO'GIC.AS

Y DE RECURSOS NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

GiITLE

DIRECTOR:

PATRICIO RIVERA R.

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR:

Oscar MArrHEl J.

REPRESENTANTE LEGAL:

GUILLERMO CLErIiCUS E.

PROPIETARIO:

Universidad de Concepción

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Barros Arana 631, 3% piso, Concepción, Chile.

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Fundación Científica Los Roques, Ohio State University, U.S.A.

Venezuela

MÓNIKA DURRSCHMIDA GUILLERMO TELL

Jusrus-L1EBIG

4 EA h Universidad de Buenos Aires, Argentina

Universitát Giessen, Alemania Federal

Harotbo Toro

Universidad de Chile, Santiago Universidad Católica, Valparaíso

ISSN 0016-531X

MATFTANA

ZOOLOGIA 1983 N* 47

ACAROS DEL POLVO

DE LAS HABITACIONES

EN CHILE (ACARI)

HOUSE DUST MITES FROM CHILE (ACARI)

Jorge N. Artigas y María E. Casanueva

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

“Los infmutos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY, Hist. de Chale, 1:14 (1848)

Impreso en

Ebrrortal UNIVERSITARIA

San Francisco 454-Casilla 10220

Santiago-Chile

30 - diciembre, 1983

INDICE

Pág.

RESUMEN e boat 5

ARA O a ds o

INTRODUCCION AA o da e lo naa 5

MEBODOS TA E A ai 6

MUECA ette 6

¿ASS CE ESTIMEN rra O e UN Si 0 6

Mantencióntd las Ea 6

CONOS paro do ao o Te O 6

pliratamicnto dell asies pel odas aro 7

AB REV TA MORA SUS ADA SIENTES TO alos 7

RESUIRRADO Ss la do 9

Fauna acarológica de las habitaciones. .......... A A 9

IMstribución reogralica stat a elo pito plas al ens dise jara Dd laa 9

ATASE Tena sono aos rado oO O iia 10

Clave pictórica para los ácaros del polvo de habitación en Chile. ........0....... 19

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ICA AUD o OS O a a a Dela IO 14

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RURzO Sly pRUSCALE ADUANAS A e sale sie isd 19

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ACAROS DEL POLVO DE LAS HABITACIONES EN CHILE (ACARI)

HOUSE DUST MITES FROM CHILE (ACARI)

Jorge N. Artigas*, María E. Casanueva*

RESUMEN

Se estudia la fauna de ácaros que viven en el polvo de las

habitaciones en Chile. Un total de 261 muestras, proce-

dentes de 42 localidades diferentes de Chile, fueron exa-

minadas. Se reconocieron 19 especies pertenecientes a 15

géneros: Acarus siro Linné, Blattisocius tarsalis (Berlese),

Bloma kulagin: Zakhvatkin, Bloma tjibodas (Oudemans),

Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw), Cheyletus eruditus

(Schrank), Chortoglyphus arcuatus (Troupeau), Ctenogly-

phus palmafer (Fumouze y Robin), Dermatophagoides farmae

Hughes, Dermatophagordes pteronyssmus (Trouessart), Eu-

gamasus sp., Eucheyletía hardy: Baker, Glycyphagus destructor

(Schrank), Glycyphagus domesticus (De Geer), Glycyphagus

ornatus (Kramer), Gohiería fusca (Oudemans), Rhazoglyphus

callae Oudemans, Spinibdella sp. y Tyrophagus putrescentiae

(Schrank). Para cada especie se indican sus sinónimos más

conocidos, figuras de machos y hembras adultos, una

diagnosis morfológica, consideraciones relativas a su dis-

tribución geográfica y el porcentaje relativo que ocupa en

las poblaciones de ácaros del polvo. Se incluye una clave

pictórica para determinar las especies. Las especies men-

cionadas, excepto Glycyphagus domesticus (De Geer) y Der-

matophagordes pteronyssinus (Trouessart) constituyen pri-

mer registro válido para Chile.

ABSTRACT

The Acarological fauna from house dust in Chile is stu-

died. A total of 261 samples from 42 different chilean

localities were examined. The following 19 species from

15 genera are described: Acarus siro Linné, Blattisocius

tarsalis (Berlese), Bloma kulagúu Zakhvatkin, Bloma tjibo-

das Oudemans, Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw), Chey-

letus eruditus (Schrank), Chortoglyphus arcuatus (Troupeau),

Ctenoglyphus palmifer (Fumouze and Robin), Dermatopha-

guides farmmae Hughes, Dermatophagoides pteronyssinus

(Trouessart), Eugamasus sp., Eucheylena hardy: Baker, Gly-

oyphagus destructor (Schrank), Glyeyphagus domesticus (De

Geer), Glycyphagus ornatus (Kramer), Gohieria fusca (Oude-

mans), Rhizoglyphus callae Oudemans, Spimibdella sp. and

Tyrophagus putrescentiae (Schrank), were determined. The

most common sinonimous, figures of male and female

adults, a short morphological diagnosis and considera-

tions related with geographical distribution and porcen-

tual significance in the Acarological fauna of house dust,

1s given for each of the species studied. A pictorial key for

identification of the species is included. The species listed,

with the exception of Glycyphagus domesticus (De Geer) and

Dermatophagorwdes pteronyssinus (Trouessart), are the first

valid record for Chile.

KEYWORDS: Acari, Sistemática, Morfología, Distribu-

ción, Polvo habitación, alergenos, Chile.

INTRODUCCION

El estudio de los ácaros ha tenido un auge

importante en los últimos 30 años. Primero

por la gran significación económica de los áca-

ros fitófagos, luego por las pérdidas que oca-

sionan en los productos almacenados y última-

*Depto. Zoología, Univ. de Concepción, Casilla 2407,

Concepción, Chile.

mente por su relación con problemas de salud

humana.

Algunos ácaros son responsables de graves

alergias y asma bronquial en personas sensi-

bles (Voorhorst, R., M.I.A. Spieksma-

Boezeman y F.Th.M. Spieksma, 1964; Voor-

horst, R., F.Th.M. Spieksma, H. Varekamp,

M.J. Leupen y A.W. Lyklema, 1967; Voor-

horst, R., y F.Th. Spieksma, 1969; Spieksma,

F.Th. y M.LA. Spieksma-Boezeman, 1967;

Maunsell, K., D. Wraith y A.M. Cunnington,

1968). Se han efectuado estudios sobre las po-

blaciones de ácaros que viven en los colchones

(Sánchez-Medina, M., L.D. Charlet y M.S.

Mulla, 1979; Haarlov, N. y M. Alani, 1970).

La mayoría de los trabajos relacionados con

ácaros de las habitaciones han sido efectuados

en Estados Unidos, Inglaterra, Francia y Ja-

pón. Para Sudamérica los trabajos son escasos;

se destaca el trabajo de Sánchez-Medina,

Charlet y Mulla, 1979 que estudia los “Cam-

bios estacionales en la población y peculiarida-

des de los ácaros Pyroglyphidae en Bogotá,

Colombia”.

Para Chile no hay trabajos de significación,

salvo esporádicas notas médicas relacionadas

con alergias y asma.

Usualmente los médicos especialistas en

dermatología y alergias se refieren a estos

ácaros como “dermatofagoides”, sin embargo

éstos constituyen poblaciones multiespecíficas

variables. En Chile están representados al me-

nos 14 géneros además de Dermatophagordes

Bogdanov, 1864.

Este trabajo entrega, en una primera pros-

pección cualititativa, las especies que se en-

cuentran comúnmente en las habitaciones ur-

banas de Chile. Abre así la posibilidad de

orientar los tratamientos de acuerdo con el

complejo de las especies estrictamente involu-

cradas.

METODOS

MUESTREO

Los ácaros se obtuvieron de polvo de habita-

ción que había permanecido quieto por un

período no inferior a 3 semanas. Principal-

mente, polvo de sobre y bajo muebles que no

se mueven con frecuencia, sobre largueros de

camas, bajo y sobre alfombras, en pieles, pape-

les murales y ropa almacenada.

El método de recolecta consistió en reunir

el polvo (preferentemente dormitorios) con

escobilla y depositarlo en una bolsa plástica

con una etiqueta donde se consignaron datos

descriptivos del ambiente, fecha y de la exis-

tencia de personas alérgicas usuarias de la ha-

bitación. Para cubrir un número significativo

de localidades se distribuyó por correo un set

explicativo que incluía una bolsa plástica y un

sobre de retorno franqueado con la dirección

del laboratorio. Se enviaron 380 sets a 164

personas; algunas de ellas correspondieron a

11 pacientes indicados por el Dr. Juan Grau

Vilarubias.

ANÁLISIS DE LAS MUESTRAS

Las muestras se estudiaron bajo microscopio

estereoscópico con 50 aumentos y se anotó

para cada una: las especies observadas, su es-

tado de desarrollo y una nota arbitraria que

indicaba la cantidad de cada una de las espe-

cies. Una vez estudiadas las muestras, se reti-

raron adultos para ser instalados en depósitos

especiales de crianzas puras y para montaje en

preparaciones microscópicas permanentes.

MANTENCIÓN DE LAS MUESTRAS

Las muestras se guardaron en cámaras de

crianza a 25%C con humedad de 75-80%.

Cuando la muestra resultó especialmente in-

teresante por las especies que contenía o por

las particularidades de la localidad, se dividió

en varias cápsulas y cada cierto tiempo, usual-

mente 2 meses, se efectuaron controles y nue-

vos repiques.

CULTIVOS

Ejemplares adultos de ambos sexos, de una

sola especie, se depositaron en tubos de vidrio

(vials) de 5 cms de alto por 2 cms de diámetro,

cerrados con lámina fina de polietileno ajusta-

da con un elástico alrededor del cuello.

El medio de cultivo varió de acuerdo a las

especies. Se usaron cuatro medios: a) leche

seca y levadura seca en partes iguales, b) leva-

dura y harina en partes iguales, c) alimento de

perro y levadura, d) levadura seca y polvo de

escama de pelo humano.

Para establecer una crianza pura, se retira-

ron adultos de las muestras por medio de una

microespátula. Se depositaron en promedio

20 ejemplares en cada frasco con 0,25 gr de

alimento. Las microespátulas y lancetas se fla-

mearon continuamente para evitar infestacio-

nes indeseables.

Se instalaron aproximadamente 100 fras-

cos en depósitos térmicos de plástico de 28 X

20 x 20 cms. Los depósitos plásticos llevan en

el fondo una solución sobresaturada de NaCl

hasta una altura de 10 cms, un calefactor de

agua y un termostato regulado a 25%C con 1

grado de tolerancia.

Estas crianzas se revisaron semanalmente

para comprobar su desarrollo y su pureza es-

pecífica. Las crianzas contaminadas fueron

sistemáticamente eliminadas.

Del material criado se efectuaron dibujos,

fotos al microscopio electrónico de barrido

(no incluidas en el texto) y montajes en prepa-

raciones permanentes para la colección de re-

ferencia del Museo de Zoología de la Universi-

dad de Concepción. (MZUC).

TRATAMIENTO DE LAS ESPECIES

Las especies incluidas en este trabajo se pre-

sentan en forma de dibujos originales comple-

tos, en vista dorsal y ventral para los adultos

machos y hembras. En las especies Ctenogly-

phus palmier, Gohiería fusca, Spimbdella sp., Blat-

tisocius tarsalis y Eucheyletia hardy: las figuras de

los machos corresponden a ilustraciones de

otros autores. En Eugamasus sp. no se conoce

la hembra. Se agrega una corta diagnosis con

los caracteres morfológicos específicos más re-

levantes, los cuales permiten distinguir la es-

pecie cuando los individuos han sido prepara-

dos para observación microscópica.

No se entregan descripciones exhausti-

vas, propias de trabajos sistemáticos formales,

para posibilitar el uso instrumental de esta

prospección ilustrada preliminar.

Cada seta ha sido denominada de acuerdo

con la nomenclatura propuesta por Hughes

(1973) y se han mantenido las siglas corres-

pondientes. Si una estructura no tiene sigla en

este trabajo, se usó una correspondiente al

nombre español.

Se indica la longitud del idiosoma tomada

de una preparación microscópica.

Se incluye información sobre distribución y

ambientes conocida de otros autores y se apor-

ta información nueva referente a Chile.

La clave permite a una persona con media-

na especialización determinar las especies del

polvo de habitación en Chile. La clave pictóri-

ca se diseñó sobre la base de una clave dicotó-

mica simple lograda por medio de un estudio

por computación de 17 caracteres morfológi-

cos. Se procesó mediante el programa KEY-2

(Morse, 1974) en el Computador Burroughs

1860 perteneciente a la Dirección de Planifica-

ción e Informática de la Universidad de Con-

cepción.

ABREVIATURAS USADAS EN EL TEXTO*

a = seta anal

AA = abertura anal

Act = acetábulo

ADS = placa dorsal anterior

AG = abertura genital

Ap = apodema

Apt = apotele

ba = seta del tarso 1

BC = bursa copulatrix

BF = basifémur

*Se han mantenido la mayoría de las abreviaturas usa-

das por autores precedentes (Hughes, 1973; Summers y

Price, 1970; Griffiths, 1964). Cuando ello no fue conve-

niente para mantener uniformidad dentro del trabajo, se

usaron abreviaturas diferentes.

Cc = cornículo

cG = seta terminal de la gena

Ch = quelícero

CM = cripta metópica

Cu = cupulae

d = seta dorsal

da = seta dorsal adicional

dm = dedo móvil del quelícero

E = espolón

Epd = escudo propodosomal

Epg = epiginio

6 = solenidio espiniforme

F = fémur

seta genital

gena

glándula lateroabdominal

seta genital mediana

seta de la tibia

seta humeral

seta humeral externa

seta humeral interna

seta ventral de las tibias, 1, II

seta humeral ventral

hipostoma

seta ventral de las tibias, III, IV

seta lateral

seta lateral anterior

labrum

seta lateral posterior

malae

seta basal de la gena

ojo

peritrema

seta postanal

poro circular

pilus dentilas

pedipalpos

placa dorsal posterior

seta paragenital

placa genital

placa genito-anal

placa genital posterior

placa histerosomal

placa propodosomal

protegmen

seta preanal

seta supracoxal

placa esterno-genital

pretarso

placa ventro-anal

seta marginal dorsal anterior

seta marginal dorsal posterior

seta del tarso 1

scP

SCX

sdm

sle

rostro

receptáculo seminífero

Seta ventral del idiosoma

seta sacra externa

seta sacra interna

seta escapular externa

seta escapular interna

seta central del propodosoma

seta coxal

seta dorso-mediana

seta lateral equidistante

espina maxilar

espermiodactilo

seta anexa O soporte

surco sejugal

seta subterminal

seta esternal

estigma

esternón

tegmen

tibia

tubo copulador

uña tibial del pedipalpo

seta addorsal del tarso

tectum

telofémur

seta del tarso 1

tritosternum

tarso

tibio-tarso

uña

uroporo

ventosa anal

seta vertical externa

ventosa del fémur

seta vertical interna

ventosa del tarso

seta tarso 1 (= escama tarsal)

solenidio phi

solenidio sigma

solenidio omega

RESULTADOS

FAUNA ACAROLOGICA DE LAS

HABITACIONES

La fauna acarológica depende de los sustratos

y de las condiciones de temperatura y hume-

dad que existan en las habitaciones. Por ello,

los complejos de especies que habitan juntas

varían para cada localidad y en muchos casos

para cada habitación en particular.

En una misma habitación se pueden encon-

trar complejos diferentes en los distintos sus-

tratos: colchón, bajo muebles, alfombra, pie-

les, empapelado de la pared, etc. Del mismo

modo, la población en un sustrato puede tener

diferente composición en las diversas estacio-

nes del año (Sánchez-Medina, M., L.D. Char-

let y M.S. Mulla, 1979).

Las condiciones climáticas, preferentemen-

te la humedad, afectan las poblaciones de áca-

ros. En general el aumento de la humedad

favorece el desarrollo de los ácaros, más aún si

la temperatura se eleva a 20-25"C.

Las estaciones del año afectan el microclima

de las habitaciones cuando éstas no están cli-

matizadas. Cada estación tiene características

propias en relación al polen, restos animales y

restos vegetales que están en suspensión en el

alre. Estos elementos entran en las habitacio-

nes con el arre, acarreados por las cabelleras

y ropas de las personas, las pelambreras de los

animales domésticos y los traslados de mue-

bles. Es así como el medio en que viven los

ácaros en las habitaciones es fluctuante a lo

largo del año.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA

La distribución que se estudia se basa en el

análisis de 261 muestras correspondientes a

42 localidades en Chile.

Esta primera prospección es necesariamen-

te incompleta, faltan varias ciudades y pueblos

importantes.

Los tipos de habitación en cada localidad

han correspondido a casas de personas que

han colaborado voluntariamente, no a una se-

lección planificada de tipos de viviendas.

La ciudad de Concepción, por ser la sede de

Si bien la mayoría de los ácaros son cosmo-

politas, los complejos de especies varían de

acuerdo con las variaciones del medio, por ello

es conveniente efectuar análisis cuali-

cuantitativos de las poblaciones para cada ca-

so, en particular, si el objetivo es efectuar tra-

tamientos inmunológicos.

En esta primera prospección, se estableció

que en Chile existen las siguientes especies de

ácaros, en el polvo de las habitaciones:

l. Acarus siro Linné, 1758.

9. Blattisocius tarsalis (Berlese, 1918).

3. Blomia kulagini Zakhvatkin, 1936.

4. Blomia tjibodas (Oudemans, 1910).

5. Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw,

1794).

6. Cheyletus eruditus (Schrank, 1781).

7. Chortoglyphus arcuatus (Yroupeau, 1879).

8. Ctenoglyphus palmifer (Fumouze y Robin,

1868).

9. Dermatophagodes farnmae Hughes, 1961.

10. Dermatophagordes pteronyssmus (| roues-

sart, 1897).

11. Eugamasus sp.

12. Eucheyletia hardy Baker, 1949.

13. Glycyphagus destructor (Schrank, 1781).

14. Glyoyphagus domesticus (De Geer, 1778).

15. Glyeyphagus ornatus (Kramer, 1881).

16. Gohieria fusca (Oudemans, 1902).

Rhazoglyphus callae Oudemans, 1924.

18. Spimbdella sp.

19. Tyrophagus putrescentiae (Schrank, 1781).

la investigación, es la mejor conocida, el 29,3%

del total de las muestras corresponde a esta

localidad.

La presencia de 18 de las 19 especies en

Concepción, permite concluir que la mayoría

de ellas se han establecido definitivamente, en

localidades con clima templado y húmedo.

La condición de ciudades-puerto de Con-

cepción-Talcahuano, con gran actividad in-

dustrial, implica activo movimiento de perso-

nas en tránsito y asegura una permanente

reinfestación proveniente de diversos lugares

del mundo. Otras ciudades de Chile, con cli-

mas más extremos, podrán mostrar una aca-

rofauna más restringida y en ciertos casos par-

ticular.

En las 18 muestras obtenidas de Punta Are-

nas, se determinaron cinco especies: Tyropha-

gus putrescentiae, Cheyletus eruditus, Eugamasus

sp., Glycyphagus destructor y Dermatophagordes

pleronyssmus; constituyendo el registro de Eu-

gamasus sp., el único para Chile.

Algunas especies como Gohueria fusca ha si-

do encontrada en localidades tan diversas co-

mo La Serena, Talcahuano, Concepción y Te-

muco; Glycyphagus ornains, en Dichato (costa) y

Concepción (orillas del río Biobío, a 20 km de

la costa); Blomia kulagini, en Santiago, Concep-

ción, Temuco y Lanco. Sin embargo, se obser-

van ciertas concordancias en otras especies

(información que puede ser alterada con

mayor número de muestras) como: Glycypha-

gus ornatus, Cheletomorpha lepidopterorum, Blatti-

soctus tarsalis, que se les ha determinado sólo

en muestras de Chillán (36%30'S) al sur. La

especie Cheletomorpha lepidopterorum se ha re-

ANALISIS TAXONOMICO

La fauna acarológica del polvo de habitación

determinada por primera vez en este trabajo

para Chile está representada por los subórde-

nes Astigmata, Prostigmata y Mesostigmata;

con ocho familias y catorce géneros: Acaridae,

con dos géneros y dos especies; Chortoglyphi-

dae, con un género y una especie; Glycyphagi-

dae, con cuatro géneros y cinco especies; Pyro-

glyphidae, con un género y dos especies;

Cheyletidae, con tres géneros y tres especies;

Bdellidae, con un género y una especie no

identificada; Ascidae, con un género y una

especie, y Parasitidae, con un género y una

especie no identificada.

Las especies son tratadas individualmente

por orden taxonómico hasta familia. Los gé-

neros siguen orden alfabético dentro de las

familias.

gistrado sólo en ciudades húmedas, de vera-

nos e inviernos templados como Concepción y

Valdivia. Dos especies Ctenoglyphus palmafer y

Spinibdella sp., han sido encontradas sólo en

Concepción y C. palmifer siempre en muestras

de una misma casa habitación, de adobe y de,

aproximadamente, 50 años.

Las especies Tyrophagus putrescentrae, Cheyle-

tus eruditus, Chortoglyphus arcuatus y Glycypha-

gus destructor son las de mayor distribución en

Chile. Se les encuentra en más del 90% de las

muestras estudiadas y en casi todas las lo-

calidades.

En cuatro localidades, de donde se ha anali-

zado una muestra de cada una: Huasco, Villa

Alemana, Limache e Isla Grande de Tierra

del Fuego, no se han encontrado ácaros.

Con un número significativamente mayor

de muestras será posible establecer, por com-

putación, relaciones entre los parámetros am-

bientales y las especies.

En la Fig. 1 se indica la presencia de las

especies en las diferentes localidades estu-

diadas.

Los diferentes sistemas usados por los auto-

res en la presentación y ordenación de los

sinónimos de las especies hacen difícil, en al-

gunos casos, seguir con precisión la historia

del taxón. Por esta causa, en algunas ordena-

ciones sinonímicas presentadas en este tra-

bajo falta información del número de página

y, en algunas, del autor responsable de una

nueva combinación; en ambos casos se ha

dejado constancia (fide) de la fuente de la in-

formación disponible.

Las ordenaciones sinonímicas de este tra-

bajo incluyen aportes de los autores, tanto en

la incorporación de nuevos sinónimos, defini-

ción del binomio actualizado, como en la co-

rrección y adición de información bibliográ-

fica.

-6-7-9-10

13-15-19

17-18-19

Pitruf

leg Sagra

6-10-19

Antofagasta

Alemana

1 uh

Santia

San Bernardo —— 6-7-14

ORancagua.

: —4-6-13-19

“OC urico

ON = = 92

d pS Talca 13 13-19

| ¿O San Javier

Cauquenesg / ¿OLinares

- Parral

13-19

Fic. 1. Distribución de las especies de ácaros del polvo de habitación en las diferentes localidades estudiadas. Los números

corresponden a la lista de las especies indicada previamente (p. 9).

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ASTIGMATA

ACARIDAE

Acarus siro Linné, 1758

Figs. 2-6

Acarus siro var. farmae Linné, 1758, 1: 616;

Solomon, 1962, 50: 178-184; Griffiths,

1964, 2(6): 432-443; Hughes, 1973, 9: 33-

40; González, R.H. et al., 1973: 34.

Tyroglyphus farinae Latreille, 1796: 185. (fade

Griffiths, 1964).

Aleurobius farimae (Linné) var. africana Oude-

mans, 1906 b, 2: 43.

Idiosoma incoloro, ovalado, más largo que an-

cho; color del gnatosoma y patas variable, de

amarillo pálido a marrón-rojizo. Setas del

idiosoma delgadas y lisas, excepto la vertical

interna (vz), escapulares interna (sc1) y externa

(sce), que son levemente pectinadas en toda su

longitud o sólo en parte. Placa propodosomal

ancha, se extiende por detrás de las setas esca-

pulares; seta vertical externa (ve) corta, con

longitud igual a un cuarto la longitud de la

vertical interna (2); setas escapulares dispues-

tas en una fila transversa, con longitud igual a

un cuarto de la longitud del idiosoma, sce leve-

mente más corta que sci; dos setas laterales

(la-lp) de igual longitud. Margen posterior del

idiosoma con cuatro a cinco setas: sacra exter-

na (sae), sacra interna (saz) y postanales l a 3

(pay-paz).

Patas cortas, con longitud igual o levemente

más cortas que la mitad de la longitud del

idiosoma. Todas las patas con pretarso (PT)

corto y una uña (u); apodemas pata 1 (Ap)

unidos, forman un corto esternón (Stn), resto

de los apodemas (Ap2-Apa4) libres.

Macho (Fig. 2)

Extremo posterior del idiosoma con tres pares

de setas cortas y dos pares de setas largas; seta

postanal 3 (paz) levemente más larga que setas

sacra externa (sae) y postanal 1 (pa); pas más

corta que saz. En vista ventral (Fig. 3) pata 1 con

un espolón (E) en el lado ventral del fémur, de

donde nace la seta uF; tarso pata 1v con un par

de ventosas (vT) separadas entre sí por una

distancia igual a su diámetro, ubicadas más

cerca de la base del tarso que del ápice. Aber-

tura genital (AG) alargada, ubicada entre las

coxas 1v, con dos pares de acetábulos (Act) y

tres pares de setas genitales (g,-£3): g2 ubicada

ala altura de la media distancia entre los acetá-

bulos pero desplazada lateralmente, gy a la

altura del extremo posterior de la abertura

genital. Abertura anal (AA) alargada, con un

par de ventosas anales (vA) ubicadas en los

lados del extremo posterior de la abertura

anal y, un par de setas preanales (pra) cortas,

en posición anterior a las ventosas anales, late-

rales al extremo anterior de la abertura anal.

Longitud del idiosoma: 320-460 pm.

Hembra (Fig. 4)

Similar al macho en la forma del idiosoma y

disposición de las setas dorsales. Extremo pos-

terior del idiosoma con dos pares de setas lar-

gas, pa, tan larga como sa: y dos pares de setas

cortas, pas levemente más largas que sae. En

vista ventral (Fig. 5), pata 1 sin espolón ventral

en el fémur y sin ventosas tarsales en la pata 1v;

escama tarsal (wa) aproximadamente el doble

más larga que en el macho. Abertura genital

(AG) triangular, ubicada entre las coxas 111 y

1v, rodeada por dos pares de acetábulos (Act) y

tres pares de setas genitales (21-23): g2 ubicada

a la altura de los acetábulos, gy en el extremo

posterior de la abertura, desplazada lateral-

mente. Abertura anal (AA) alargada, no alcan-

za el extremo posterior del idiosoma; con cin-

co pares de setas anales (a¡-as): a, de posición

lateral al extremo anterior de la abertura anal,

az y az de igual longitud y tres a cuatro veces

más largas que a;, as y as. Longitud del idioso-

ma: 350-480 um.

Acarus siro es considerada una “peste” im-

portante de los productos almacenados (Hug-

hes, 1973). Se le encuentra en lugares donde

se almacenan diferentes tipos de cereales en

grano, harina o heno. Se le ha registrado tam-

bién en cultivos de hongos, depósitos de que-

sos, gallineros, colmenares y piso de habita-

ción.

Se le encuentra asociada con Tyrophagus pu-

trescentiae, Glycyphagus destructor y Cheyletus eru- DISTRIBUCIÓN

ditus, donde constituye cerca del 10% de la

SS ; Cosmopolita. Se registra por primera vez en

población de ácaros.

Chile en Concepción (Fig. 6).

PROPODOSOMA

IDIOSOMA

HISTEROSOMA

paz

Fic. 2. Vista dorsal del macho de Acarus siro Linné.

)

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100/4m

Fic. 4. Vista dorsal de la hembra de Acarus siro Linné.

Fic. 5. Vista ventral de la hembra de Acarus siro Linné. Fic. 6. Distribución geográfica conocida de A. siro en

Chile.

Rhizoglyphus callae Oudemans, 1924

Figs. 7-10

Rhazoglyphus callae Oudemans, 1924a, 6: 317-

336; Hughes, 1961 b: 78; 1973: 122; Mauri,

1982, 41(1-4): 93-96.

Rhizoglyphus lucasu Hughes, 1948: 168 pp.

Rhizoglyphus echinopus (Fumouze y Robin,

1968) sensu Eyndhoven van, 1963, 36: 48-

49, y Manson, 1972, 13(4): 626.

Hembra (Fig. 7)

Idiosoma globoso, cutícula lisa y brillante.

Quelíceros grandes. Placa propodosomal rec-

tangular. Setas dorsales filamentosas y lisas;

seta vertical interna (ws) nace de la mitad ante-

rior del propodosoma, seta vertical externa

(ve) corta, aproximadamente un décimo de la

longitud de vi, se origina en la mitad del mar-

gen lateral de la placa propodosomal; setas

escapulares en una línea transversa por detrás

de la placa propodosomal, sce dos veces más

larga que sci; seta humeral externa (he) más

larga que humeral interna (41), he inserta cerca

del borde lateral del idiosoma, hi desplazada

lateralmente y posterior a he; seta supracoxal

(Ps) lisa y setiforme; adyacente a la seta supra-

coxal existe una abertura ovalada; cuatro setas

dorsales (d) dispuestas en una línea longitudi-

nal mediana: d, d, y dy similares en longitud y

d, dos veces más larga que dy; setas laterales (/)

insertas en el borde lateral del idiosoma: lp

levemente más larga que la; setas sacras (sa)

nacen del margen posterior del idiosoma: sar,

sae subiguales en longitud. Glándula lateroab-

dominal (GLA) antes de la.

Patas marrón-rojizas y cortas, más cortas

que el idiosoma, robustas y con espinas grue-

sas. Tarsos 1-11 con una espina corta y promi-

nente (ba) en su extremo proximal, extremo

distal con cuatro setas largas y un solenidio

espiniforme (e), adjunto a la uña; solenidio w;

más largo que wz; todos los tarsos terminan en

una uña larga y gruesa; solenidio q pata 1

largo, más largo que el tarso; tibia 1 con dos

setas ventrales: g7' espiniforme y AT simple;

gena 1 con solenidios 0, y 09 próximos en-

tre sí, dorsales y ubicados en el extremo ante-

rior del segmento, con dos setas simples (cG y

mG); fémur 1 y coxa 1 con una seta simple,

ventralmente.

En vista ventral (Fig. 8), hipostoma (Hyp)

formado por los pedipalpos y dos lóbulos: ma-

lae (m); con una espina maxilar (sm), ubicada

en el tercio basal del hipostoma. Idiosoma con

una seta humeral ventral (Av), ubicada a la

altura de la inserción de las setas dorsales ha y

he. Apodemas de las patas prominentes y es-

clerotizados: Ap, unido formando un corto

esternón (Stn), resto de los apodemas libres;

coxas 1, 11 y 111 con una seta coxal(scx) lisa y

coxas 1v sin seta coxal. Abertura genital (AG)

triangular, ubicada entre las coxas 111 y Iv; Con

tres pares de setas genitales (2): g» y g3 simila-

res en longitud, g, la mitad de esa longitud;

acetábulos (Act) grandes. Abertura anal (44)

alargada, no alcanza el extremo posterior del

idiosoma; con seis pares de setas anales (a)

similares en longitud, dispuestas en una línea

a cada lado de la abertura anal. Abertura de la

bursa copulatrix (BC) posterior a la abertura

anal, se comunica con la abertura del

receptáculo seminífero (rs) digitiforme. Con

un par de setas postanales (pa) en el borde

posterior del idiosoma, insertas a la altura de

la abertura del receptáculo seminífero. Idio-

soma con tres poros circulares (pc), uno próxi-

mo a hv y dos, cercanos entre sí, en posición

lateral a la altura de la mitad de la abertura

anal. Longitud del idiosoma: 650-730 um.

MacHo

Non visum (Fig. 9, ex Hughes), Hughes, 1973, p.

122: “Similar a R. robin, pero se distingue por

la gran longitud de las setas dorsales. Seta ve

está presente como una microseta mediana, a

lo largo del extremo lateral de la placa propo-

dosomal. Setas dorsales lisas, sobrepasan en

longitud en 10% del idiosoma. Estructuras

que soportan el pene son ampliamente diver-

gentes (Fig. 133 c). Longitud del idiosoma:

650-700 um”.

Rhizoglyphus callae se encuentra en bulbos

de Narcisus, Fresia, Calla, jacintos, gladiolos,

lirios, tulipán y ajo. También se ha encontrado

en trigo húmedo en pudrición y en los desper-

dicios grasos de una fábrica de manteca (fide

Hughes, 1973).

En el polvo de habitación se le ha encontra-

do asociada a Glycyphagus destructor y Acarus

siro, donde constituye alrededor del 10% de la

población.

Egipto, Japón y Nueva Zelanda (Hughes,

1973). En Chile ha sido determinada para

Concepción (Fig. 10) y constituye el primer

registro de esta especie para el país.

eo No se han reconocido machos de esta espe-

DISTRIBUCIÓN

cie en el material estudiado.

Inglaterra, Holanda, Hungría, Alemania,

¡8 N 100<m

0 E d ae )

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Fic. 7. Vista dorsal de la

hembra de Rhazoglyphus callae

Oudemans.

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ntral de la hembra de Rhzoglyphus callae Or

Fic. 9. Vista dorsal del macho de Rhizoglyphus callae

Oudemans (A). Base del pene (B). (Redibujado de Hughes,

FiG. 10. Distribución geográfica conocida de R. callae en

197 AI)

Chile.

Tyrophagus putrescentiae (Schrank, 1781)

Figs. 11-15

Acarus putrescentiae Schrank, 1781: 521.

Tyrophagus(Tyroglyphus) putrescentiae(Schrank).

Oudemans, 1924a, 6: 250; 1924b, 67: 24.

Tyrophagus putrescentiae (Schrank). Womers-

ley, 1941, 6: 468, fig. 10; Zakhvatkin,

1941, 28(113): 99; Nesbitt, 1945, 23: 176,

figs. 4, 16, 28; Hughes, 1948: 20; Baker y

Wharton, 1952: p. 330; Sasa y Oshima,

1967, 18(4): 216-217; Cutcher, 1973: 509-

611; Mauri, 1982, 41(1-4): 94.

Coelognathus putrescentiae (Schrank). Turk,

1953, 6(62): 81.

Tyroglyphus lintneri Osborn, 1893, 22: 360;

Banks, 1906b, 13: 15, figs. 23-25, 29.

Tyrophagus lintner: (Osborn). Davis, 1944,879:

7, figs. 4-6; Baker y Wharton, 1952: 334.

Tyroglyphus americanus Banks, 1906b, 13:16,

figs. 20-22.

Tyroglyphus longior var. castellana Hirst, 1912,

15: 375, figs. 1, 2; Jary, 1937, 40: 130.

Tyrophagus longior var. castellana (Hirst). Bo-

llaerts y Breny, 1951, 4(6): 738-764.

Tyrophagus longior var. taiwanensis Sugimoto,

1938: 46, pl. 3, figs. 1-8.

Tyrophagus castellanú (Hirst). Hughes, 1948:

21, figs. 14-20; Baker y Wharton, 1952:

330,

Coelognathus castellana (Hirst). Turk, 1953: 81.

Tyroglyphus muscae Sasaki, 1927, 9: 151, figs.

8-11.

Tyrophagus vanheurm Oudemans, 1924a: 326.

Tyrophagus noxtus Zakhvatkin, 1936a: 25;

1941: 103, figs. 36-38, 121, 125-131; Vol-

gin, 1949, 65: 385.

Tyrophagus bullery Volostschuck, 1936, 8: 155.

Tyroglyphus nadinus Lombardini, 1944, 30: 65,

figs. 1 y 2.

Idiosoma ovalado, más largo que ancho, divi-

dido en bropodosoma e histerosoma; cutícula

lisa y brillante. Propodosoma subtriangular,

con un escudo propodosomal (Epd) subrec-

tangular que se extiende desde la base de las

setas verticales internas (vs) hasta la base de las

setas escapulares internas (scz); histerosoma

con borde posterior redondeado. Setas del

idiosoma delgadas, levemente pectinadas; la

escapular interna (wz) se proyecta hacia ade-

tante sobrepasando ligeramente el ápice de los

quelíceros (Ch), dos veces más largas que las

verticales externas (ve); setas escapulares lar-

gas, más largas que el propodosoma; escapu-

lar interna (sc) más larga que la escapular

externa (sce); seta supracoxal (Ps) ancha en la

base, ápice atenuado, en el tercio basal hay

aproximadamente 14 proyecciones que emer-

gen de los costados y dorso; seta humeral in-

terna (h1) levemente más larga que la humeral

externa (he); cuatro pares de setas dorsales (d)

equidistantes: d, y da, d y dy, alineadas, d, con

longitud igual a la mitad de ds, dy aproximada-

mente igual a un tercio de da, dy y d, similares

en longitud; dos setas laterales (la-lp): la más

corta que lp; con dos setas sacras (sal, sae) de

igual longitud. Patas cortas, más cortas que el

idiosoma; ápice de los pretarsos con una uña

(u); tarso 1 no excede en longitud a la gena y

tibia juntas.

Macho (Fig. 11)

Setas postanales (pa) tan largas como el idioso-

ma, pa, delgada y corta, más corta que paz y

pas. Patas con solenidio y filiforme, largo, que

sobrepasa la longitud del tarso; gena, con so-

lenidio, sigma, (0) ligeramente más largo

que sigma» (0); ventosas del tarso 1v (vT),

equidistantes a partir de la base y ápice del

segmento proximal. En vista ventral (Fig. 12),

abertura genital (AG) triangular, ubicada en-

tre las coxas 1v, con tres pares de setas genita-

les (g1-83): go ubicada entre los acetábulos

(Act). Abertura anal (44) alargada, ubicada a

la media distancia entre la abertura genital y el

borde posterior del cuerpo; con un par de

ventosas anales (vA) en su extremo posterior y

un par de setas anales (a) ubicadas en el mar-

gen anterior de las ventosas. Longitud del

idiosoma: 280-390 um.

HemBRA (Fig. 13)

Similar al macho en forma del idiosoma, lon-

gitud y disposición de las setas dorsales. Setas

postanales (pa) con longitud igual a la mitad

del idiosoma; pas inserta en el borde posterior

del idiosoma y ligeramente más larga que pa;

de inserción anterior. Patas con solenidio q

tan largo como la longitud del tarso. En vista

ventral (Fig. 14), abertura genital (AG) alarga-

da, ubicada entre las coxas 111 y IV; tres pares

de setas genitales (g): g, a la altura de las coxas

11, go ubicada entre los acetábulos (Act), g3 a la

altura del extremo posterior de la abertura

genital, desplazada hacia la coxa tv y dos veces

más larga que g,. Abertura anal (44) alargada,

casi alcanza el extremo posterior del cuerpo,

rodeada por cinco pares de setas anales (a): a1,

49, A3 y as Cortas, de similar longitud, a, cinco

veces más larga que las restantes. Longitud del

idiosoma: 320-450 yum.

Tyrophagus putrescentiae es común en ali-

mentos almacenados con alto contenido de

grasas y proteínas: huevos secos, jamón, hari-

na de pescado, queso; también habita en dife-

rentes tipos de semillas, harina y tabaco (Hug-

hes, 1973).

Se le encuentra asociado a Glycyphagus des-

tructor, Cheyletus eruditus, Chortoglyphus arcua-

tus, donde a menudo constituye cerca del 40%

de la población.

DisTRIBUCIÓN

Cosmopolita. Registrado por primera vez en

Chile, ha sido determinado para: Coquimbo,

La Serena, Vicuña, Ovalle, La Cruz, Viña del

Mar, Valparaíso, Quilpué, Santiago, San Ber-

nardo, Curicó, San Javier, Linares, Chillán,

Dichato, Talcahuano, Concepción, Arauco,

Temuco, Pitrufquén, Villarrica, Panguipull,

Valdivia, Purranque, Chiloé-Yaldad y Punta

Arenas (Fig. 15).

em td

—- y E Ay pa

_sci

SF No

Fic. 11. Vista dorsal del macho de Tyrophagus putrescentiae (Schrank).

Fic. 12. Vista ventral del macho de Tyrophagus putrescentiae (Schranko.

y 9 ) Í 0 - LL

e N N AA

FiG. 13. Vista dorsal de la

hembra de Tyrophagus putrescentiae (Schrank). 27

100um

Fic. 14. Vista ventral de la hembra de Tyrophagus

putrescentae (Schrank).

Fic. 15. Distribución geográfica conocida de 1. putrescen-

tae en Chile.

CHORTOGLYPHIDAE

Chortoglyphus arcuatus (Troupeau, 1879)

Figs. 16-20

Tyroglyphus arcuatus Troupeau, 1879.

Chortoglyphus arcuatus (Troupeau).

Chortoglyphus nudus Berlese, 1884.

(sin. fide Hughes, 1973).

Idiosoma ovalado, más largo que ancho, de

color variable entre amarillo claro y rojo-

marrón; patas y gnatosoma marrón claro;

quelíceros grandes, cutícula lisa. Sin placa pro-

podosomal. Setas dorsales del idiosoma delga-

das y cortas; seta vertical interna (uz) lisa y

corta, se proyecta sobre el gnatosoma; seta

vertical externa (ve) pectinada, tan larga o le-

vemente más larga que vz; seta escapular inter-

na (sci) y externa (sce) equidistantes, dispuestas

en una fila transversa; cuatro pares de setas

dorsales (d¡-d4) iguales en longitud, dispuestas

en una línea longitudinal en la zona media del

idiosoma; dos setas laterales (la-lp): la leve-

mente más larga que /p; dos setas sacras (sas,

sae) iguales en longitud.

Patas más cortas que el idiosoma; tarsos

alargados, escama tarsal (wa) espiniforme; so-

lenidio tibial (6) largo, tan o más largo que el

tarso; gena y tibia de las patas con setas ventra-

les mG, cG, hT y gT claramente pectinadas.

Macho (Fig. 16)

Setas dorsales d¡, ds y dy equidistantes, d, ubi-

cada en el tercio posterior del idiosoma; late-

ral posterior (/p) ubicada en la zona entre patas

111 y 1V; sacra externa (sae) inserta más cerca de

«la pata 1v que del extremo posterior del idioso-

ma. Patas 1v con solenidio y más largo que en

patas 1, 11 y 111. En vista ventral (Fig. 17), apo-

demas de las patas 1 y 11 (Ap, Apo) forman

parte de los pliegues genitales. Abertura geni-

tal (AG) alargada, ubicada entre las coxas 1 y 11,

con un par de setas genitales (g) largas, dis-

puestas a la altura de la mitad de la longitud de

la abertura. Abertura anal (44) no alcanza el

extremo posterior del idiosoma, rodeada por

un par de ventosas anales (vA); con dos pares

de setas anales, un par anterior a las ventosas

(a) y otro posterior a ellas (pa). Longitud del

idiosoma: 250-300 jm.

HemBRa (Fig. 18)

Similar al macho en forma del idiosoma y lon-

gitud de las setas dorsales. Setas dorsales do, d:;

y d, equidistantes, d, separada de dy por dos

veces la distancia entre da y dx; lateral poste-

rior (/p) ubicada entre patas 11 y 111, más cerca

de esta última; sacra externa (sae) más cerca

del extremo posterior del idiosoma que de la

pata 1v. Pata 1 con solenidio q más largo que en

patas 11, 111 y 1v; pata 1v levemente más larga

que las restantes. En vista ventral (Fig. 19),

apodemas de las patas 1 (4fp,) unidos, forman

un corto esternón (Str). Abertura genital (4G)

alargada, ubicada entre coxas 111 y 1v, con an-

chas placas genitales y bordes fuertemente es-

clerotizados; sin acetábulos; con un par de

setas genitales (g) ubicadas en los costados de

la región anterior de la abertura. Abertura

anal (44) más larga que ancha, alcanza el ex-

tremo posterior del idiosoma; con cinco pares

de setas anales (a¡-as): a; y as equidistantes,

dispuestas a la altura de la mitad de la abertu-

ra; as, ay y as en el tercio posterior de la abertu-

ra, 44 y as paralelas, dispuestas en una línea

transversa. Longitud del idiosoma: 350-400

um.

Chortoglyphus arcuatus es común en pisos de

graneros, molinos y establos. También se en-

cuentra en depósitos de trigo, centeno, avena

y semillas (Hughes, 1973).

Se le encuentra asociada a Golueria fusca,

Acarus siro, Cheyletus eruditus, Glycyphagus des-

tructor y Tyrophagus putrescentiae, donde consti-

tuye cerca del 30% de la población.

DISTRIBUCIÓN

Inglaterra, Francia, Bélgica, Italia, Alemania,

Holanda, Polonia, Checoslovaquia, Rusia,

Nueva Zelanda y Barbados (Hughes, 1973).

Registrada por primera vez en Chile, se ha

determinado en: Arica, Coquimbo, La Sere- Tomé, Talcahuano, Concepción, Chiguayan-

na, La Cruz, Viña del Mar, Valparaíso, Santia- te, Arauco, Temuco, Valdivia, Purranque,

go, San Bernardo, Linares, Chillán, Dichato, Puerto Varas y Chiloé-Yaldad (Fig. 20).

sai Ñ

pa!

Paz 10Q4m

Fic. 16. Vista dorsal del macho de Chortoglyphus arcuatus (Troupeau).

1peau).

toglyphus arcuatus (Tror

al del macho de Chor

Fic. 17. Vista ventr

Fic. 18. Vista dorsal de la hembra de Chortoglyphus arcuatus (Troupeau).

Fic. 19. Vista ventral de la hembra de Chortoglyphus Fic. 20. Distribución geográfica conocida de €. arcuatus en

arcuatus (Troupeau). Chile.

GLYCYPHAGIDAE

Blomia kulagimi Zakhvatkin, 1936

Figs. 21-25

Bloma kulagin: Zakhvatkin, 1936b, 45(4): 268-

270; Bronswijk y Cock, 1973, 14(3): 490-

505; Hughes, 1973: 163.

Idiosoma globoso, levemente más largo que

ancho; margen anterior recto; cutícula rugo-

sa, con pequeñas papilas. Quelíceros grandes.

Todas las setas dorsales del idiosoma largas y

pectinadas, excepto la seta dorsal 2 (d») que es

corta y simple; seta vertical interna (uz) y verti-

cal externa (ve) dispuestas formando un trape-

cio; setas escapulares en una línea transversa,

sei levemente más larga que sce; seta humeral

(h) posterior y lateral a sce; seta supracoxal

pectinada (Ps), con sus ramas desiguales en

longitud; cinco setas dorsales (d): do aproxima-

damente un décimo de dy, d ligeramente más

larga que la mitad de da, d, y d; que son simila-

res en longitud; con cinco setas laterales (1): l,

tan larga como sce, ly, ly, l; similares en longi-

tud; con cuatro cupulae (Cu) entre las setas

laterales.

Patas más cortas que el idiosoma; sin uñas

visibles; tarsos alargados, tarsos 1 con soleni-

dios w, y ws equidistantes en la base tarsal, w;

más ancho en el ápice que en la base y más

largo que ws; patas 1, 11 y 1 con solenidio q

largo, sobrepasa la longitud del tarso; soleni-

dio y pata 1v más corto que el tarso; apodemas

de las patas 1 (Ap) unidos, formando un corto

esternón (Stn).

Macho (Fig. 21)

Apice de los tarsos con tres setas lisas. En vista

ventral (Fig. 22), abertura genital (AG) trian-

gular, ubicada entre las coxas 111 y 1v, con dos

acetábulos (Act) grandes, ubicados a la altura

de la mitad de la longitud total de la abertura;

tres pares de setas genitales (g): g, anterior y

lateral a la abertura genital, go larga, más larga

que g1 y g3, sobrepasa el extremo posterior de

la abertura genital y alcanza el ápice de la

abertura anal, g3 posterior y lateral a los acetá-

bulos. Abertura anal (44) ovalada, alcanza el

extremo posterior del idiosoma; con tres pa-

res de setas anales (a): a, lisa y larga, ubicada

lateral al extremo anterior de la abertura, a» y

az pectinada, insertas en el borde posterior del

idiosoma, az más larga que az. Longitud del

idiosoma: 330 a 360 um.

HemBRA (Fig. 23)

Similar al macho. Dorso del idiosoma con una

glándula lateroabdominal (GLA) ubicada en el

interior del triángulo formado por da, la y la.

Extremo posterior del idiosoma con una

proyección lateral (PL) próxima a la inserción

de l;. Tubo copulador (Tc) levemente curva-

do y puntudo, ubicado en el centro del borde

posterior del idiosoma. En vista ventral (Fig.

24), abertura genital (AG) ubicada entre las

coxas 111 y 1v; placas genitales (PG) alargadas,

sin epiginio; con dos acetábulos (Act) insertos

próximos al borde de la placa, entre las setas go

y £3; tres pares de setas genitales (g): g, más

corta que go y g3, inserta a la altura del borde

anterior de la abertura genital, gz ubicada en

el tercio posterior y gy ligeramente más próxi-

ma a g, que a g3. Abertura anal (44) alargada,

con seis pares de setas anales (a): a] y as lisa, 42

más larga que a; e inserta posterior y lateral a

esta última, az - ag claramente pectinadas, dg a

lo menos dos veces más larga que 43, 44 y 45

similares en longitud y más cortas que a3. Lon-

gitud del idiosoma: 350-380 jm.

Las especies del género Bloma se encuen-

tran especialmente en productos almacena-

dos, Blomia kulagin: se ha encontrado en depó-

sitos de trigo almacenado (Zakhvatkin, 1942) y

en polvo de un gimnasio en Japón (Bronswijk

y Cock, 1973).

En Chile se ha colectado en polvo de habita-

ción asociada con Cheyletus eruditus, Chortogly-

phus arcuatus y Dermatophagowdes pteronyssinus,

donde constituye alrededor del 45% de la po-

blación.

DisTRIBUCIÓN

Japón y Rusia (Bronswijk y Cock, 1973). Se

registra por primera vez en Chile en Santiago,

Concepción, Temuco y Osorno (Fig. 25).

Fic. 21. Vista dorsal del macho de Blomia kulagim Zakhvatkin.

1001m

FiG. 22. Vista ventral del macho de Blomia kulagim Zakhvatkin.

Fic. 23. Vista dorsal de la hembra de Blomia kulagini Zakhvatkin.

LLE

=—

Fic. 24. Vista ventral de la hembra de Bloma kulagini Fic. 25. Distribución geográfica conocida de B. kulagin en

Zakhvatkin. Chile.

Blomia tjibodas (Oudemans, 1910)

Figs. 26-30

Glycyphagus tjibodas Oudemans, 1910, 3: 74.

Bloma tjibodas (Oudemans). Oudemans, 1928,

7: 348; Zakhvatkin, 1936b, 45(4): 268-270;

Bronswijk y Cock, 1973, 14(3): 490-505.

Idiosoma globoso, más largo que ancho, con

una constricción entre patas 1 y 11; margen

anterior recto; cutícula rugosa, con pequeñas

papilas. Quelíceros (Ch) grandes. Todas las

setas dorsales del idiosoma largas y pectina-

das, excepto la seta dorsai 2 (do) que es corta y

simple; seta vertical interna (v2) y vertical ex-

terna (ve) dispuestas en una línea casi recta;

setas escapulares en una línea transversa, sc1 y

sce de similar longitud; seta humeral (A) poste-

rior y lateral a /,; seta supracoxal (Ps) angosta,

ramificada y con sus ramas desiguales en lon-

gitud; cinco setas dorsales (d): dy aproximada-

mente la mitad de d, dz más corta que da, d;

aproximadamente cuatro veces la longitud de

dy; cinco setas laterales (1): l, tan larga como

sce, la similar a l3 y l, similar a l;; con cuatro

cupulae (Cu) entre las setas laterales y dor-

sales.

Patas más cortas que el idiosoma; con una

uña pequeña; tarsos alargados, tarso 1 con so-

lenidios w; y w3 equidistantes de la base tarsal,

w, capitado y más largo que ws; pata 1 con

solenidio pg más largo que el tarso; apodemas

de las patas 1 (Ap,) unidos, formando un corto

esternón (Stn).

Macho (Fig. 26)

Todas las patas con solenidio p un tercio más

largo que el tarso. En vista ventral (Fig. 27),

abertura genital (AG) triangular, ubicada en-

tre coxas 111 y 1v, con dos acetábulos (Act) pe-

queños, ubicados a la altura del tercio anterior

de la abertura; tres pares de setas genitales

(g): gy anterior y lateral a la abertura genital, g2

inserta en la mitad de las placas genitales y más

larga que £, y g3, sobrepasa el extremo poste-

rior de la abertura genital pero no alcanza el

ápice de la abertura anal, g3 posterior y lateral

a los acetábulos. Abertura anal (44) alargada,

alcanza el extremo posterior del idiosoma; con

dos pares de setas anales (a): a, lisa y larga,

ubicada en el espacio comprendido entre la

abertura genital y la abertura anal, az pectina-

da, larga, inserta a la altura del extremo poste-

rior de la abertura anal. Longitud del idioso-

ma: 320-380 um.

Nora: En el material estudiado no se ha ubica-

do la seta as. Bronswijk, J., et al. 1973: 497

indica: “todos tienen tres pares de setas anales.

El primer par (a 1) son desnudas, las otras

pectinadas” (trad.). La generalización que ha-

ce este autor para las tres especies pudiera no

ser válida para B. tjibodas, en la cual estaría

ausente a9 (Fig. 26).

Hembra (Fig. 28)

Similar al macho; patas 11, 111 y 1v con solenidio

q levemente más largo que el tarso, no mayor

que un sexto de la longitud. Dorso del idioso-

ma con una glándula lateroabdominal (GLA)

ubicada en el interior del triángulo formado

por da, lo y lz. Extremo posterior del idiosoma

sin una proyección lateral. Tubo copulador

(Tc) corto, levemente curvado y puntiagudo.

En vista ventral (Fig. 29), abertura genital

(AG) ubicada entre coxas 111 y 1v; placas genita-

les alargadas, extremo posterior redondeado,

sin epiginio; con dos acetábulos (Act) peque-

ños y esclerotizados, insertos a la altura de la

mitad de la longitud de las placas laterales,

próximos a la seta go; tres pares de setas geni-

tales (g): g3 dos veces más larga que gy leve-

mente más larga que g», g, inserta a la altura

del borde anterior de la abertura genital, go

más próxima a g, que a g3, g3 ubicada en el

tercio posterior de la abertura genital. Abertu-

ra anal (AA) alargada, no alcanza el extremo

posterior del idiosoma; con cinco pares de

setas anales (a): a¡, ao, as y as lisas, az pectinada

y cuatro veces más larga que 44 y 45, 41 y 02

similares en longitud, levemente más cortas

que a, y as, insertas a la altura del borde ante-

rior de la abertura anal, ay y as similares en

longitud ubicadas lateralmente al extremo

posterior de la abertura anal. Longitud del

idiosoma: 350-420 pm.

Nora: En el material estudiado se han ubica-

do cinco pares de setas anales. Zakhvatkin, A.,

1936b: 268 indica para el género: “seis pares

de setas anales en las hembras” (trad.). De

acuerdo con nuestro material, B. tjibodas se

diferenciaría de las otras especies por carecer

de la seta as.

Bloma tjibodas (Oudemans, 1910) es la espe-

cie tipo del género Bloma.

Se ha recolectado en polvo de habitación

(Zakhvatkin, 1941) y en establos (Bronswijk,

Cock y Oshima, 1973).

En Chile se ha colectado en polvo de habita-

ción asociada con Glycyphagus destructor, Cheyle-

tus eruditus, Chortoglyphus arcuatus, Dermatopha-

gowdes pteronyssinus, Glycyphagus domesticus y Ty-

rophagus putrescentiae, donde constituye alre-

dedor del 40% de la población.

DISTRIBUCIÓN

Holanda: Arnhem y Java: Friesland (Brons-

wijk, Cock y Oshima, 1973). Se registra por

primera vez para Chile en Rancagua, Chillán y

Temuco (Fig. 30).

Fic. 26. Vista dorsal del macho de Bloma ibodas (Oudemans).

Fic. 27. Vista ventral del macho de Bloma tjibodas (Oudemans).

Fic. 28. Vista dorsal de la hembra de Blomia nbodas (Oudemans).

Fic. 29. Vista ventral de la hembra de Blomia tjibodas Fic. 30. Distribución geográfica conocida de B. tjibodas en

(Oudemans). Chile.

Ctenoglyphus palmifer (Fumouze y Robin, 1868)

Figs. 31-35

Glycyphagus palmifer Fumouze y Robin, 1868,

5(3): 287-306.

Ctenoglyphus palmifer (Fumouze y Robin).

Hughes, 1973: 173-174.

Idiosoma levemente más largo que ancho, con

un surco por detrás de las patas 11; cutícula con

textura granular, de color amarillento. Setas

del idiosoma lanceoladas, excepto seta dorsal

dy en el macho. Márgenes del idiosoma con

número variable de setas lanceoladas y pecti-

nadas. Patas cortas, más cortas que el idioso-

ma; solenidio p pata 1 más largo que el tarso;

todas las patas con una uña tarsal (u).

Macho (Fig. 31)

Setas dorsales d,, da y dy lanceoladas, do más

corta que d;; dx larga, dos veces más larga que

d,, angosta y densamente pectinada; todas las

setas laterales (/-l;5) angostas, más angostas

que en la hembra, lanceoladas y bipectinadas;

setas sacras (sae, 5a2) tan largas como d,. Pata 1

levemente más larga que las patas restantes;

solenidio p pata 1 más largo que el tarso; pata 11

con solenidio q levemente más largo que el

tarso y en patas 111 y 1v más corto que el tarso;

solenidio 0, levemente más largo que 0. En

vista ventral (Fig. 32), apodemas de las patas 1

(Ap¡) unidos formando un corto esternón

(Stn); apodemas patas 1, 111 y 1v (Apo, Ap3 y

Apa) unidos en su región basal; coxas patas 1 y

Iv COn una seta supracoxal (scx). Abertura ge-

nital (AG) alargada, ubicada entre las coxas 111

y 1v, con dos pares de setas genitales: g, ante-

rior a la abertura genital y go lateral a ella; con

un par de acetábulos (Act) pequeños, poco es-

clerotizados, posteriores a la seta genital go.

Abertura anal (AA) simple y alargada, con un

par de setas anales (a) ubicadas en el extremo

anterior de la abertura anal. Longitud del

idiosoma: 170-210 pm.

Hembra (Fig. 33)

Similar al macho en forma y color del idioso-

ma; margen de la cutícula idiosomal irregular,

con proyecciones laterales; setas dorsales d.,

do y d, más cortas que dx; seta sacra externa

(sae) más angosta y puntiaguda que el resto de

las setas dorsales periféricas del idiosoma. Pa-

tas 1 y 1 con solenidio q más largo que el tarso,

en patas 111 y 1v solenidio q más corto que el

tarso. En vista ventral (Fig. 34), apodemas pa-

ta 1 (Ap) unidos, apodemas patas 11 (Apo) libres

y apodemas patas 111 y 1v unidos entre sí; coxa 1

y 1 con una seta supracoxal (scx). Abertura

genital (AG) alargada, ubicada entre las coxas

11 y 1v, con anchas placas genitales (PG), con

dos pares de setas genitales: £; a la altura del

epiginio (Epg) y g» inserta a la altura de la

mitad de la abertura genital. Con un par de

setas lisas ubicadas a la media distancia entre la

abertura genital y abertura anal. Abertura

anal (AA) alargada, no alcanza el extremo pos-

terior del idiosoma, con tres pares de setas

anales: a; lateral a la región anterior de la

abertura, as a la altura de la mitad de la abertu-

ra, desplazada lateralmente y az en el extremo

posterior de la abertura anal. Desde el extre-

mo posterior del idiosoma se proyecta la bursa

copulatrix (BC). Longitud del idiosoma: 220-

250 pm.

Ctenoglyphus palmifer es común en polvo de

murallas, sótanos, establos, polvo de paja y en

reservorios de arena (fide Hughes, 1973: 173).

En el polvo de habitación se le ha encontra-

do asociada a Glycyphagus domesticus y Tyropha-

gus putrescentiae, donde constituye alrededor

del 10%.

DISTRIBUCIÓN

Inglaterra, Francia, Italia, Alemania e Irlanda

(Hughes, 1973). Registrada por primera vez

en Chile, se ha determinado en: Concepción

(Fig. 35).

Fic. 31. Vista dorsal del macho de Ctenoglyphus palmifer (Fumouze y Robin).

;. 32. Vista ventral del macho de Ctenoglyphus palmafer (Fumouze y Robin).

III

(Fumouze y Robin).

Fic. 33. Vista dorsal de la hembra de Ctenoglyphus palmifer

Fic. 34. Vista ventral de la hembra de Ctenoglyphus

palmifer (Fumouze y Robin).

Él

Fic. 35. Distribución geográfica conocida de €. palmafer en

Chile.

Glyoyphagus destructor (Schrank, 1781)

Figs. 36-40

Acarus destructor Schrank, 1781: 507-524.

Glycyphagus destructor (Schrank). (fide Hughes,

1961: 150).

Lepidoglyphus destructor (Schrank). Hughes,

1961 b: 150

Acarus spinipes Koch, 1841. (fide Hughes,

1973: 150).

Glycyphagus anglicus Hull, 1913. (fide Hughes,

197350150):

Lepidoglyphus cadaverum (Schrank). Turk y

Turk, 1957(1): 1-233.

Idiosoma más largo que ancho, con pequeña

constricción por detrás del cuarto par de pa-

tas; cutícula blanca opaca, cubierta de peque-

ñas papilas alargadas, cónicas y de ápice trun-

cado. Sin crista metópica. Seta supracoxal (Ps)

ramificada con extremos bifurcados. Setas del

idiosoma largas, densamente pectinadas; setas

verticales internas (vz) insertas próximas al

borde anterior del idiosoma y dirigidas hacia

adelante, sobrepasando el ápice de los quelíce-

ros; setas verticales externas (ve) posteriores a

vi, ala altura de la distancia media entre coxas

1 y 11; setas escapulares interna (sc?) y externa

(sce) dispuestas en fila transversa por detrás de

las patas 11; con dos setas humerales (/) entre

patas 1 y 111, humeral externa (he) más próxi-

ma a la pata 1 y humeral interna (42) más

próxima a la pata 111, levemente más dorsal

que he; cuatro pares de setas dorsales (d): dy

tan o más larga que do», d, y dy dispuestas casi

en línea con ve y sci, d3 posterior y tres veces

más larga que da, d, posterior a dy y con longi-

tud igual a dos veces seta d»; tres setas laterales

(1): la el doble de longitud de l;, l3 casi tan larga

como 1, más lo. Extremo posterior del idioso-

ma con dos setas sacras: sacra externa (sae) con

longitud igual a la mitad de la sacra interna

(sai); tres pares de setas postanales (pa): paz

igual al doble de pa, y paz con longitud igual a

la mitad de pa. Patas delgadas, especialmente

el tercer y cuarto par; todos los tarsos envuel-

tos en una escama subtarsal (wa) tan larga

como el tarso; patas 111 y 1v con seta ventral

(XT) ubicada por detrás de la membrana artro-

podial.

Macho (Figs. 36 y 37)

Apodemas de las patas 1 forman un corto es-

ternón (Stn), apodemas patas.111 y 1v reduci-

dos. Abertura genital (AG) alargada, ubicada

entre las coxas 1 y 111, placa anterior triangular

y región posterior a la altura de los apodemas

de las coxas 111; tres pares de setas genitales (4):

gy ubicada lateralmente a la placa anterior, g»

a la altura de la mitad de la abertura genital y

ga de posición posterior, se origina por detrás

de la abertura genital. Abertura anal (AA) se

extiende hasta el margen posterior del idioso-

ma; un par de setas anales (a) en el extremo

anterior de la abertura anal. Longitud del

idiosoma: 350 a 500 qm.

Hembra (Fig. 38)

Similar al macho en forma del idiosoma, dis-

posición y longitud de las setas dorsales. En

vista ventral (Fig. 39), abertura genital (AG)

alargada, ubicada entre las coxas 111 y Iv, pla-

cas genitales grandes, placa anterior o epigi-

nio (Epg) en forma de media luna; tres pares

de setas genitales (g): g, a la altura del epiginio,

go ubicado a un tercio de la longitud total de la

abertura genital y g3 en el extremo posterior

de ella. Abertura anal (44) alargada, no alcan-

za el extremo posterior del idiosoma; con dos

pares de setas anales (a): as más larga que a,,

ambas insertas a cada lado del extremo ante-

rior de la abertura anal. Longitud del idioso-

ma: 400 a 560 qm.

Glycyphagus destructor es común en los pro-

ductos almacenados como avena, arroz, frutas

secas y en remolacha; también se le ha encon-

trado sobre insectos muertos, estómagos secos

de terneros, piel seca de mamíferos, nidos de

roedores, gallineros y en polvo de habitación

(Hughes, 1973). Frecuentemente se le en-

cuentra asociada con Acarus siro, Cheyletus eru-

ditus, Glycyphagus ornatus y Tyrophagus putres-

centíae, donde constituye cerca del 60% de la

población.

DisTRIBUCIÓN

Cosmopolita. Registrada por primera vez en

Chile, ha sido determinada para: Arica, Anto-

fagasta, Coquimbo, La Serena, La Cruz, Viña

del Mar, Valparaíso, Quilpué, Santiago, San

Bernardo, Rancagua, Curicó, Talca, Cauque-

nes, Chillán, Tomé, Talcahuano, Concepción,

Chiguayante, Temuco, Villarrica, Lanco,

Osorno, Purranque, Puerto Varas y Chiloé

(Fig. 40).

Fic. 36. Vista dorsal del macho de Glycyphagus destructor (Schrank).

al EA

| IO

ZA e

LEA e CEST

Fic. 37. Vista ventral del macho de Glycyphagus destructor (Schrank).

Fic. 38. Vista dorsal de la hembra de Glycyphagus destructor (Schrank).

Fic. 39. Vista ventral de la hembra de Glyoyphagus Fic. 40. Distribución geográfica conocida de G. destructor

destructor (Schrank). en Chile.

Glycyphagus domesticus (De Geer, 1778)

Figs. 41-45

Acarus domesticus De Geer, 1778: 7.

Glycyphagus domesticus (De Geer). (fide Hughes,

1973: 140).

Oudemansium domesticum (De Geer). Zakhvat-

kin, 1936 b, 45: 263-270.

Idiosoma ovalado, atenuado en la región ante-

rior. Cutícula opaca, cubierta por pequeñas

papilas. Seta supracoxal (Ps) bifurcada y rami-

ficada. Cripta metópica (CM) angosta, elonga-

da, se extiende desde la base de los quelíceros

hasta el nivel de las setas verticales externas

(ve); seta vertical interna (wi) ubicada en la

región más ancha de la cripta metópica, dirigi-

das hacia adelante sobrepasando el ápice de

los quelíceros. Setas del idiosoma largas, den-

samente pectinadas; setas escapulares interna

(sc1) y externa (sce) dispuestas en fila transversa

por detrás de las patas 11, sci ligeramente más

larga que sce; dos setas humerales (he, h2) entre

las patas 11 y 111, he más próxima a la pata 11;

cuatro pares de setas dorsales (d): do. corta, su

longitud igual a la mitad de d, y a la altura de

ds, da y d, más largas que do; tres setas laterales

(1): l, aproximadamente la mitad de la y la, lo y

ls de similar longitud. Extremo posterior del

idiosoma con dos setas sacras: sacra interna

(sai) más larga que sacra externa (sae); tres

setas postanales (pa): pa, más larga que pas y

paz, pas casi igual a la mitad de paz e inserta

ventralmente.

Patas delgadas y largas; todos los tarsos

alargados, con una uña pequeña; seta wa cor-

ta, pectinada, presente en todos los tarsos;

tarso 1 con setas ra, ba y Tla insertas entre la

seta wa y el ápice del tarso; base del tarso 1 con

solenidio w, dos veces más largo que ws, am-

bos más largos que el famulus (E); gena 1 con

solenidio dr, más corto que 9, tan largo como

w,; tibias 11 y 1v con seta kT inserta ventral-

mente en el extremo distal del segmento; apo-

demas de las patas 1 unidos formando un corto

esternón (Stn).

Macho (Fig. 41)

Setas humerales interna (h1) y externa (he) dis-

puestas en una fila, próximas al borde del

idiosoma; pa, —a lo menos— dos veces más

larga que sae y d, levemente más larga que pa.

En vista ventral (Fig. 42), abertura genital

(AG) ovalada, ubicada a la altura de las coxas

111, con dos pares de acetábulos (4.t) peque-

ños; placa genital anterior más ancha que lar-

ga, placas laterales angostas y aguzadas en su

extremo posterior; tres pares de setas genita-

les (g): g, anterior a la abertura genital, go

lateral a la placa genital anterior, g3 inserta a la

altura del ápice de la placa lateral, ligeramente

más larga que g, y g2. Abertura anal (44)

simple, alargada, no alcanza el borde poste-

rior del idiosoma; un par de setas anales (a) en

el extremo anterior de la abertura anal. Longi-

tud del idiosoma: 320-440 pum.

HemBRA (Fig. 43)

Similar al macho. Seta humeral interna (h)

desplazada dorso-lateralmente con respecto a

la humeral externa (he); pay tan larga como sae

y d, más larga que pay; todas las patas con

solenidio g más corto que el tarso. En vista

ventral (Fig. 44), abertura genital (AG) alarga-

da, ubicada entre las coxas 11 y 1v; placa genital

anterior o epiginio (Epg) en forma de media

luna, placa genital lateral más ancha en la base

que en el ápice; dos acetábulos (Act) pequeños

insertos a la altura de la mitad de la longitud

de la abertura genital; tres pares de setas geni-

tales (g): g, a la altura del ápice posterior del

epiginio, g2 ubicada a un tercio de la longitud

total de la abertura genital, ga posterior y late-

ral a ella. Abertura anal (44) alargada, no

alcanza el extremo posterior del idiosoma; con

dos pares de setas anales (a): ay más larga que

a,, ambas insertas a cada lado del extremo

anterior de la abertura anal, az posterior y

lateral a a¡. Bursa copulatrix (BC) tubular, se

proyecta desde el margen posterior del idioso-

ma. Longitud del idiosoma: 380-580 jm.

Glycyphagus domesticus es una especie de am-

plia distribución, a menudo se presenta en

variado número de plantas secas, animales

que permanecen en las casas, en establos pero

no en el pasto; se ha encontrado en depósitos

de harina, trigo, tabaco, queso, jamón, nidos

de aves y polvo de habitación (fide Hughes,

1973). Ha sido asociada con síntomas de asma

en los seres humanos (Deschiens, 1951).

En Chile se le ha colectado en polvo de

habitación asociada con Cheyletus eruditus, Blo-

mia tjibodas, Tyrophagus putrescentiae, donde

constituye cerca del 65% de la población.

DisTRIBUCIÓN

Cosmopolita, pero más frecuente en Europa

que en Canadá, Japón y Australia (Hughes,

1973). Ha sido citada para Santiago de Chile

por Barriga y Reyes, 1965: 123 (figura no

reconocible). En el presente trabajo ha sido

determinada para Chile en Concepción y Val-

divia (Fig. 45).

Fic. 41. Vista dorsal del macho de

Ghyyphagus domesticus (De Geer). 5

Fic. 42. Vista ventral del macho de Glycyphagus domesticus (De Geer).

Fic. 43. Visia dorsal de la hembra de Glycyphagus domesticus (De Geer).

Fic. 44. Vista ventral de la hembra de Glycyphagus

domesticus (De Geer).

Fic. 45. Distribución geográfica conocida de G. domesticus

en Chile.

Glycyphagus ornatus Kramer, 1881

Figs. 46-50

Glycyphagus ornatus Kramer, 1881(54): 417-

452; Hughes, 1961 b, (9): 1-287; 1973: 144-

147.

Idiosoma ovalado, más ancho entre patas 11 y

111. Cutícula blanca, con pequeñas papilas. Se-

ta supracoxal (Ps) ramificada. Cripta metópica

(CM) angosta, elongada, se extiende desde la

base de los quelíceros hasta el nivel de las setas

verticales externas (ve); seta vertical interna

(vi) ubicada en la región más ancha de la zona

media del esclerite de la cripta metópica, diri-

gida hacia adelante sobrepasando el ápice de

los quelíceros; setas dorsales (d) largas, pecti-

nadas: d, dos veces más larga que da, d» larga,

excede la longitud del idiosoma, cuatro veces

la longitud de ds, d, tres a cuatro veces más

larga que d»; dos setas humerales (4), humeral

externa (he) más corta que humeral interna

(hi); tres setas laterales (1): l, y lo iguales en

longitud, ly más larga que las restantes; seta

sacra interna (saz) levemente más larga que la

sacra externa (sae); dos setas postanales (pa,

pas).

Patas largas y delgadas; solenidio q largo,

puede o no sobrepasar la longitud tarsal; apo-

demas de las patas 1 unidos formando un corto

esternón (Stn).

Macho (Fig. 46)

Patas 1 y 11 más gruesas que patas 111 y Iv; seta

ventral de la tibia (47) modificada en una es-

tructura triangular, pilosa, con 9 a 10 dientes

en pata 1 y 4 a 5 dientes en pata 11; tibia de las

patas 1 y 1 con solenidio (p) largo, sobrepasa la

longitud tarsal, en patas 111 y 1v es tan largo

como el tarso; en tibias 11 y 1v, la membrana

artropodial se extiende hasta la base de la seta

ventral kT, todos los tarsos elongados, ápice

con una uña pequeña; gena pata 1 con soleni-

dio dr, más largo que 0;.

En vista ventral (Fig. 47) abertura genital

(AG) triangular, ubicada entre las coxas 11 y 111,

con dos pares de acetábulos (Act); tres pares de

setas genitales (g): g3 posterior a la abertura

genital. Abertura anal (44) simple, alargada,

se extiende hasta el borde posterior del idioso-

ma; con un par de setas anales (a) ubicadas en

posición levemente anterior a la abertura. Dos

pares de setas postanales (pa): pa, nace del

borde posterior del idiosoma, paz más corta

que pa, y de posición claramente ventral. Lon-

gitud del idiosoma: 430-500 um.

HembBRA (Fig. 48)

Similar al macho. Patas 1 y 11 levemente más

gruesas que patas 1 y 1v. En vista ventral (Fig.

49), tibias 1 y 11 con seta AT normal, setiforme y

pectinada. Margen posterior de la abertura

genital (AG) a la altura de los apodemas de las

patas 11, epiginio (Epg) en forma de media

luna; tres pares de setas genitales (21-83): Y3

ubicada a la altura de las coxas 1v. Abertura

anal (AA) semiovalada, no alcanza el margen

posterior del idiosoma, con dos pares de setas

anales (a): as larga, dos veces más larga que a,

ambas equidistantes y anteriores a la abertura

anal. Seta postanal 1 (pa,) más corta que pas.

Longitud del idiosoma: 540-600 pm.

Glycyphagus ornatus es común en lugares de

almacenamiento de trigo, heno y semillas. Se

le ha encontrado también en residuos de hari-

na, nidos de diferentes animales como roedo-

res, insectívoros, topos, musarañas y poco fre-

cuentemente en polvo de habitación (Hughes,

1973).

En Chile se le ha colectado en polvo de

habitación asociada con Glycyphagus destructor,

Tyrophagus putrescentiae y Acarus siro, donde

constituye cerca del 18% de la población.

DisTRIBUCIÓN

Inglaterra, Alemania, Holanda, Francia, Ita-

lia, Rusia, Israel, Checoslovaquia, Polonia

(Hughes, 1973). Se registra por primera vez

para Chile en Chillán, Dichato y Concepción

(Fig. 50).

Fic. 46. Vista dorsal del macho de Glycyphagus ornatus Kramer.

Fic. 47. Vista ventral del macho de Glyoyphagus ornatus Kramer.

sx SS ”

ZIZZIAS

ACE

Fic. 48. Vista dorsal de la hembra de Glycyphagus ornatus Kramer.

Fic. 49. Vista ventral de la hembra de Glycyphagus Fic. 50. Distribución geográfica conocida de G. ornatus en

ornatus Kramer. Chile.

Gohieria fusca (Oudemans, 1902)

Figs. 51-54

Glycyphagus fuscus Oudemans, 1902. (fide

Hughes, 1973: 178).

Ferminia fusca (Oudemans). (fide Hughes,

1973: 178).

Gohiería fusca (Oudemans). (fide Hughes,

19733178):

MaAcHo

Non visum (Fig. 51 ex Hughes) “Superficie dor-

sal y ventral cubiertas por una cutícula perfo-

rada de color marrón a rosado. Una extensión

en forma de capuchón del idiosoma descansa

sobre el gnatosoma. El margen anterior del

histerosoma está marcado por un pliegue

transversal, así en el animal vivo, el histeroso-

ma. parece estar cubierto por una placa sepa-

rada. Los apodemas de todas las patas están

débilmente engrosados, aquéllos de las patas 1

se unen para formar un corto esternón; los

bordes internos de los apodemas 11 a 1v se

unen para delimitar un área de la cutícula,

desprovista de color, ubicada frente a la aber-

tura genital. La cutícula de la superficie ven-

tral es fuertemente más perforada que la dor-

sal y una cutícula no coloreada une la superfi-

cie dorsal y ventral. La abertura genital está

ubicada entre las coxas 1v, el pene es un tubo

recto cuyo ápice está dirigido posteriormente.

La abertura anal se extiende hasta el margen

posterior del cuerpo y un par de setas anales

aparece en su extremo anterior.

Con la excepción de las setas vi: que son

pectinadas, todas las setas del idiosoma son

sólo levemente serradas; aquéllas que nacen

del propodosoma están dirigidas hacia ade-

lante, aquéllas del histerosoma lateralmente y

hacia atrás. Las setas ve están casi en la misma

línea transversa que la seta supracoxal pecti-

nada, cada una de las cuales yace en un surco;

sei, sce y hi están en un nivel una con otra y

cuatro pares de setas dorsales están dispuestas

en series lineares.

Las patas son cortas y gruesas, el pretarso se

origina del lado ventral del ápice de cada tar-

so. Los extremos distales de las genas y fému-

res están expandidos, como para envolver

parcialmente el segmento siguiente. La super-

ficie dorsal de la gena y tibia están claramente

surcadas. Tarso 1 está reducido y aquellas setas

que normalmente ocupan la mitad del seg-

mento (Tla, ra, wa) emergen cerca de la base

del pretarso, mientras que 0, 0, famulus y ba

ocupan su posición normal. En tibia 1, q es

extraordinariamente largo, pero decrece en

longitud desde la tibia 11 a la 1v. En la gena 1,0;

es más largo que dj. Ambas setas ventrales

están presentes en tibia 1. Patas 111 y Iv están

notablemente curvadas, con un pretarso ex-

traordinariamente largo. Longitud del idioso-

ma: 300-320 jm” (ex: Hughes, 1973: 178-

179). (Traducción del inglés).

Hembra (Fig. 52)

Idiosoma oval, de color marrón; margen late-

ral anterior del propodosoma emarginado en-

tre patas 1 y 11; cutícula con finas perforaciones

en la superficie ventral y dorsal. Setas del idio-

soma finamente serradas, con excepción de

las setas verticales internas (wz) ubicadas en el

ápice del propodosoma, dirigidas hacia ade-

lante, pero no sobrepasan la longitud de los

quelíceros y, son pectinadas; setas verticales

externas (ve) ubicadas a la altura de las patas 1;

setas escapulares interna (sci), externa (sce) y

seta humeral interna (4) equidistantes, dis-

puestas en una línea transversa; cuatro setas

dorsales (d): d, da y d, en una línea longitudi-

nal, dz levemente desplazada hacia un costado,

dx y dy levemente más larga que d) y do; setas

laterales (la-lp) iguales en longitud, la a la altu-

ra de las patas 1v y lp posterior, a una distancia

igual a la longitud de la seta; dos setas sacras

(sai, sae) iguales en longitud, a igual distancia

que el espacio entre lp y sae.

Patas 1 y 11 más gruesas que 111 y Iv; genas

(G) y tibias (Tb) fuertemente surcadas dorsal y

ventralmente; base de los tarsos 1 y 11 levemen-

te surcados. Tarsos 111 y 1v sin surcos como en

los tarsos anteriores; solenidios q largos, en

patas 1 y 11 sobrepasa la longitud tarsal, en

patas 1 y iv más corto que el tarso.

En vista ventral (Fig. 53), abertura genital

(AG) ubicada entre las coxas 1 y 1v, con grandes

placas genitales (PG) laterales; epiginio (£pg)

formado por los apodemas de las patas 1; ace-

tábulo (Act) pequeño, ubicado en la región

posterior de cada placa genital; con tres pares

de setas genitales (g,-g3) equidistantes, ubica-

das a los costados de las placas genitales. Histe-

rosoma con un par de setas cortas y lisas ubica-

das en el centro del ápice, inmediatamente

detrás de la abertura genital. Abertura anal

(44) alargada, proyectada más atrás del borde

posterior del idiosoma; con cuatro pares de

setas anales (a): a, y ay anteriores a la abertura

anal y az, a, dispuestas en una línea transversa

a la altura de la media distancia de la longitud

total de la abertura anal; extremo posterior

del idiosoma con tres pares de setas postanales

(pa): paz ligeramente más cortas que pa; y pas.

Longitud del idiosoma: 380-420 um.

Gohiena fusca se encuentra en productos

almacenados como maíz, arroz, afrecho, etc.,

en polvo de habitaciones y en mezclas de hari-

na y azúcar (Hughes, 1973).

Se le ha encontrado asociada a Glycyphagus

destructor, Dermatophagoides farinae, Cheyletus

eruditus y Chortoglyphus arcuatus, donde consti-

tuye aproximadamente el 12% de la pobla-

ción.

DISTRIBUCIÓN

Inglaterra, Nueva Irlanda, Francia, Alema-

nia, Holanda, Bélgica, Checoslovaquia, Rusia,

Turquía, Nueva Zelanda, Japón y Egipto

(Hughes, 1973). Registrado por primera vez

para Chile, ha sido determinado en La Serena,

Quilpué, Dichato, Talcahuano, Concepción,

Temuco (Fig. 54).

En el presente trabajo no se han estudiado

machos de esta especie.

0.1mm.

Fic. 51. Vista ventral del macho de Gohiera fusca (Oudemans). (Redibujado de Hughes, 1973: 179).

Fic. 52. Vista dorsal de la hembra de Gohiena fusca (Oudemans).

PYROGLYPHIDAE

Dermatophagoides farmae Hughes, 1961

Figs. 55-59

Dermatophagorwdes farnmae Hughes, 1961b, 9: 1-

287; Miyamoto et. al., 1968, 42(1): 14-16;

Fain, 1967, 9: 872; Halmai y Alexander,

1971, 17(1): 69-70; Hall y Mc. Mahon,

1971, 9: 81-84; Stenius y Cunnington,

1972, 53: 340; Gridelet y Lebrun, 1973,

15(3): 463-465; Araujo, 1974: 1-134; Dus-

babek, 1975, 22: 219-229; Ishii y Miyamo-

to, 1973, 43(6): 495-507; Mumcuoglu,

1976, 13(3): 361-369; Rodríguez y Blake,

1979, 1: 211-216; Sánchez, Charlet y Mulla,

1979: 101-104, 111.

Dermatophagowdes culinae De León, 1963, 46:

247-250; Fain, 1967, 9: 870-881; Maunsell

et. al., 1968: 1268-1269; Dusbabek, 1975,

22: 219-231.

Le.

Idiosoma redondeado, constricción entre pro-

podosoma e histerosoma poco notoria o au-

sente; cutícula con estriaciones transversales

de disposición irregular. Setas del idiosoma

lisas; sin setas verticales internas (vi) ni exter-

nas (ve); seta escapular externa (sce) tres a cua-

tro veces más larga que la seta escapular inter-

na (sci); seta supracoxal (Ps) presente; dos pa-

res de largas setas en el extremo posterior del

idiosoma; seta sacra interna (sai) de longitud

igual a una vez y media el largo de la seta

postanal (pa); dos pares de setas humerales,

humeral ventral (4v) en posición anterior y

lateral a coxa 111; cuatro pares de cortas setas

dorsales (d¡-d4), dispuestas en dos líneas longi-

tudinales. Extremo posterior del idiosoma con

dos pares de setas largas, seta sacra interna

(sar) dos veces más larga que la seta postanal 1

(pay). Tibias de las patas 1, 11 y 11 con solenidio

p largo ; pata 1v con solenidio q corto; todos

los tarsos con uña pequeña y pretarsos promi-

nentes.

Macho (Fig. 55)

Con placa histerosomal poco notable; seta es-

capular externa (sce) a lo menos con una longi-

tud igual a dos veces la longitud de la seta

escapular interna (sc1); setas dorsales de igual

longitud. En vista ventral (Fig. 56), abertura

genital (AG) subtriangular, poco esclerotizada,

ubicada entre las coxas 111 y 1v; un par de setas

genitales (g3) en la región posterior de la aber-

tura. Un anillo oval perianal encierra la aber-

tura anal (44); con un par de setas preanales

(pra) y un par de ventosas anales (vA). Patas 1 y

1 más gruesas que patas 111 y 1v, la pata 1 del

doble del grosor de pata 11, pata 1v más delga-

da y corta que las otras. Apodemas 1 (Ap)

separados o fusionados en un pequeño ester-

nón (Stn), apodemas 11 (Ap3) curvos, forman

un ángulo recto. Longitud del idiosoma: 260-

360 ym.

Hembra (Fig. 57)

Se diferencia del macho por no presentar pla-

ca histerosomal; seta escapular externa (sae)

larga, cinco a seis veces más larga que la esca-

pular interna (sa); seta dorsal 1 (d,) más larga

que el resto de las setas dorsales (dy-d,); seta

humeral interna (h2) corta, igual a un tercio de

la longitud de la seta humeral ventral (4v).

Abertura genital (AG) con forma de “Y” inver-

uda, ubicada entre las coxas 111 y 1v. Epiginio

(Epg) en torma de media luna, con placa geni-

tal posterior (PGP) bien esclerotizada en sus

márgenes laterales; tres pares de setas genita-

les (g,-£,), genital posterior (g,) más corta que

el resto. En vista ventral (Fig. 58), abertura

anal (AA) simple, alargada, con dos pares de

setas anales (a¡-d,). Apodemas de pata 1 (Ap)

ampliamente separados, apodemas 11 (Af)

no se curvan en ángulo recto. Longitud del

idiosoma: 360-400 ym.

Esta especie se ha encontrado en alimentos

de cerdos, perros, mezclas que incluyen leva-

dura, alimentos farináceos, polvo de habita-

ción y en nidos de mamiferos y aves de vida

silvestre. Se encuentra asociada a Dermatopha-

gowdes pteronyssinus y Glycyphagus destructor,

donde a menudo constituye cerca del 30% de

la población.

DisTRIBUCIÓN

ra Arica, La Serena, Vicuña, Vina del Mar,

Se OSA Inglaterra, Holanda, Esta- Valparaíso, Santiago, Chillán, Dichato, Con-

dos U nidos, Japón, Rusia, Sierra Leona (Hug- cepción, Chiguayante, Pitrufquén, Panguipu-

hes, 1973). En Chile, ha sido determinada pa- lli, Valdivia y Osorno (Fig. 59)

say

Fic. 55. Vista dorsal del

sae macho de Dermatophagowdes farinae Hughes.

Fic. 58. Vista ventral de la hembra de Dermatophagordes

farinae Hughes.

Fic. 59. Distribución geográfica conocida de D. farmae en

Chile.

Dermatophagoides pteronyssinus (Trouessart, 1897)

Figs. 60-63

Meal pteronyssina Trouessart, 1897 (in Berle-

se, 1897, Fasc. 89, N? 10).

Dermatophagoides pteronyssinus (Trouessart).

Baker y Wharton, 1952: 374; Fain, 1966,

8(2): 302; Spieksma, 1967: 1-65; Sharp y

Haramoto, 1970, 20(3): 583-589; Hughes,

1973: 211-214; Keh, 1973, 20(5): 37-45;

Araujo, 1974, 5: 1-134; Muñoz. V., 1981,

5(9): 68-69; Mauri, 1982, 41(1-4): 94.

Paralgowes pteronyssoiudes Gaud y Mouchet,

1959, 34: 452-545.

Mealha toxoper Oudemans, 1928, 7: 293.

Viscopteres saitor Sasa, 1947, 34: 167-170.

Dermatophagoides sartor (Sasa). Sasa, 1950, 20:

519-525.

Macho (Fig. 60)

Idiosoma ovalado, con una constricción entre

patas 111 y 1v; cutícula con finas estriaciones

transversales y longitudinales. Placa propodo-

somal (PP) angosta, con margen posterior

emarginado en los costados y lobulado en su

porción central; placa histerosomal (PH) an-

gosta, más larga que la placa propodosomal, se

extiende desde la distancia media entre las

setas dorsales 1 y 2 hasta el extremo posterior,

margen anterior lobulado. Setas del idiosoma

lisas y cortas, excepto la seta escapular externa

(sce) cuya longitud es diez veces mayor que la

escapular interna (sc7); seta supracoxal (Ps) li-

sa; con cuatro pares de cortas setas dorsales

(d¡-d ,) dispuestas en línea a lo largo de la placa

histerosomal, excepto d¡; dos pares de setas

laterales (la-lp), similares en longitud: la inser-

ta a la altura de sce y lp a la altura de da.

Extremo posterior del idiosoma con dos pares

de setas largas, seta sacra externa (sae) más

larga que la sacra interna (saz) y dos pares de

setas cortas: pa, más larga que pas. Glándula

lateroabdominal (GLA) ubicada lateralmente a

la altura de la seta dorsal dy. Patas 1, 11 y 111

similares en longitud, pata 111 más larga que la

pata 1v; solenidio y largo en las tibias de las

patas 1, 11 y 111, corto en tibia 1v, más corto que

el tarso.

En vista ventral (Fig. 61), abertura genital

(AG) triangular, poco esclerotizada, ubicada

entre las coxas Iv; acetábulos (Act) pequeños,

ubicados a la altura de la mitad anterior de la

abertura genital; con tres pares de setas geni-

tales (g), subiguales en longitud: g, inserta la-

teral al extremo anterior de la abertura geni-

tal, go lateral al extremo posterior y gy poste-

rior a ella. Abertura anal (44) alargada, sin

alcanzar el borde posterior, rodeada de una

placa oval, esclerotizada, que lleva una ventosa

anal (vA) en el centro a cada costado; con un

par de setas anales (a) insertas en la parte

anterior de la placa. Coxas 1 y 111 con una seta

coxal (scx); apodemas patas 1 (Ap1) y 1v (Apa)

libres, apodemas patas 11 (Apo) y 111 (Ap3) fusio-

nados en su parte distal. Longitud del idioso-

ma: 320 um.

HEMBRA

Non visum (Fig. 62, ex Hughes). Hughes, 1973,

p. 214: “Cutícula con estriaciones longitudina-

les en la línea medio-dorsal, entre las setas da y

3- La bursa copulatrix se abre en la superficie

dorsal a un lado del extremo posterior del

ano. Un conducto angosto conduce al receptá-

culo seminífero y se abre en la base de una

depresión que tiene paredes esclerotizadas

(Fig. 215a). Esta depresión tiene una forma.

característica cuando se observa desde una vis-

ta terminal (Fig. 251b). Longitud del idiosoma

alrededor de 350 um”. (Traducción del in-

glés).

Dermatophagordes pteronyssinus se ha encon-

trado en polvo de piel de mamíferos (Troues-

sart, 1901), polvo de habitación (Voorhoorst,

Spieksma y Spieksma, 1964) y en polvo de

superficie de colchones (Maunsell, Wraith y

Cunnington, 1967) donde se alimenta de des-

camado de piel. Se le ha responsabilizado de

ser agente de alergia al polvo de habitación

(Voorhoorst et. al., 1964) (fide Hughes, 1973).

En Chile, en el polvo de habitación se le ha

encontrado asociada a Dermatophagordes fari-

nae, Chortoglyphus arcuatus, Glycyphagus destruc-

tor y Bloma kulagini, donde constituye alrede-

dor del 15% de la población.

DISTRIBUCIÓN En Chile ha sido determinada para La Serena,

Vicuña, Santiago, Dichato, Concepción, Chi-

guayante y Osorno (Fig. 63).

No se han reconocido hembras de esta es-

pecie en el material estudiado.

Inglaterra, Holanda, Dinamarca, Wales, Bél-

gica, Italia, Rusia, Estados Unidos y Barbados.

Probablemente cosmopolita (Hughes, 1975).

—N

O L Es

ll Y NS Ñ

A AS

dí ll AY

sai

Fic. 60. Vista dorsal del macho de Dermatophagowdes pteronyssmus (Trouessart).

35 A

SA A A S

AS e

ES,

Fic. 62. Vista dorsal de la hembra de Dermatophagordes

pteronyssmus (Trouessart). (Redibujado de Hughes, 1973:

214). (A) Sistema reproductivo de la hembra: e: abertura

bursa copulatrix, rs: región esclerotizada del receptáculo

seminifero. (B) vista posterior del receptáculo seminífero.

Fic. 63. Distribución geográfica conocida de D. pteronyssi-

nus en Chile.

MESOSTIGMATA

ASCIDAE

Blattisocius tarsalis (Berlese, 1918)

Figs. 64-66

Lasiosetus (L.) tarsalis Berlese, 1918b, 13: 134.

Melichares (Blattisocius) tarsalis (Berlese).

Evans, 1958, 131: 209.

Blattisocius tarsalis (Berlese). Chant , 1963, 4

298-300, figs. 134-138.

Typhlodromus tinewvorus

8(169): 11-20.

Blattisocius tineivorus (Oudemans) Nesbitt,

1951, 12: 51; Cunliffe y Baker, 1953, 1: 8.

Typhlodromus tinervorans (Oudemans). Hug-

hes, 1948: 144.

Lasioseius similis Schweizer, 1949, 2: 49.

-—

Oudemans, 1929,

HemBRA (Fig. 64)

Idiosoma ovoide, de color amarillo pálido.

Con una placa dorsal débilmente reticulada,

cubre la mayor parte del idiosoma, el resto es

membranoso y más amplio en la zona poste-

rior. Todas las setas dorsales levemente pecti-

nadas; cinco setas marginales (ry - 17) insertas

en la zona membranosa a cada lado de la re-

gión anterior de la placa dorsal y siete setas (R y

- R7) dispuestas en forma similar en la región

posterior. Márgenes laterales del idiosoma

con aproximadamente veinte setas equidistan-

tes (sle) de tamaño similar. Patas 1 y 1v leve-

mente más largas que patas 11 y 111; todas las

patas y pedipalpos con numerosas setas cor-

tas; ápice de los tarsos con dos uñas.

En vista ventral (Fig. 65), quelíceros peque-

ños; dedo fijo con palus dentilis (pd) en el ápice

y más corto que el dedo móvil (dm) que presen-

ta tres pequeños dientes. Pedipalpo con pe-

queñas setas espiniformes, cortas y gruesas,

ubicadas en los márgenes internos del fémur,

gena y tibia. Tritosternum (TR) bifurcado y

pectinado, ubicado en la base del margen pos-

terior ventral del gnatosoma. Placa esternal

(Stn) más ancha que larga, con tres setas (st; -

st) a cada lado del margen lateral de la placa.

Abertura genital (AG) alargada, ubicada entre

las coxas 111 y 1v; con un par de setas genitales

(g) a la altura del tercio posterior de la abertu-

ra. Abertura anal (AA) encerrada en una placa

ventroanal trapezoidal; con tres pares de setas

anales (a, - az): a, en el ángulo lateroanterior,

a2 equidistante de a, y az, en la zona media de

la placa, az a la altura del extremo posterior de

la abertura anal; con una seta postanal (pa) en

el centro del extremo posterior de la placa

ventroanal. Con cuatro setas lisas, ubicadas

entre la placa ventroanal y el margen lateral

del histerosoma. Peritrema (P) corto, se ex-

tiende desde la coxa 1v hasta el margen poste-

rior de la coxa 11. Longitud del idiosoma: 520-

600 um.

Macho

Non visum (ex: Hughes, 1973) “Similar a la

hembra. La superficie ventral está cubierta

por dos placas. Placa ventroanal cubre la

mayor parte del histerosoma; con seis pares de

setas preanales. Un “peritrema” adicional está

presente sólo en el macho, externo al peritre-

ma normal. Dedo fijo del quelícero es más

largo que en la hembra, pero aún más corto

que el dedo móvil. El espermiodactylo es cur-

vado en su extremo distal. Longitud del idio-

soma: 450 pm”. (Hughes, 1973: 326). (Tra-

ducción del inglés).

Blattisocius tarsalis se encuentra frecuente-

mente en granos almacenados infectados con

polillas del trigo pertenecientes a los géneros

Anagasta, Plodia y Sttotroga. Se le ha encontra-

do también en cultivos de Tribolvum confusum,

T. castaneum, Attagenus piceus y Tineola biselliela

(Nesbitt, 1951).

En el polvo de habitación se le ha encontra-

do asociado a Glycyphagus domesticus, Blomia

kulagimi y Cheyletus eruditus, donde constituye

alrededor del 5% de la población.

DISTRIBUCIÓN

Inglaterra, Italia, Suiza, Holanda, Norte Afri-

ca, U.S.A., Hawaii, Australia e Israel (Hughes,

1973). En Chile ha sido determinada para

Concepción y Lanco (Fig. 64), constituye el

primer registro de esta especie para el país.

No se han reconocido machos de esta espe-

cie en el material estudiado, ni se han ubicado

figuras en la literatura disponible.

Fic. 64. Vista dorsal de la hembra de Blattisocius tarsalis (Berlese)

PARASITIDAE

Eugamasus sp.

Figs. 67-69

Macho (Fig. 67)

Idiosoma de color marrón-rojizo. Superficie

dorsal cubierta por dos placas estrechamente

unidas (ADS y PDS), con numerosas setas lisas

y cortas. Gnatosoma con cornículo (C) desa-

rrollado, se origina desde la coxa del pedipal-

po; tectum (Te) con tres puntas a cada costado

del ápice, las medianas son bilobuladas; quelí-

ceros (Ch) grandes, bien esclerotizados, pue-

den invaginarse en el interior del propodoso-

ma; espermiodactiolo (SP) distalmente fusio-

nado con el dedo móvil del quelícero, dedo

fijo presenta dos a tres dientes pequeños. Tar-

so del pedipalpo, con seta especializada o apo-

tele (Apt) en posición perpendicular al tarso y

trilobulado.

Patas 1 y iv más largas que patas 11 y 111;

todas las patas muy espinosas; pretarsos (PT)

alargados, prominentes, portan dos uñas (u)

grandes.

En vista ventral (Fig. 68), placa esterno-

genital (pSG) grande, se exuende desde la co-

xa 11 hasta la coxa 1v, con cinco pares de setas.

La placa ventroanal (pVA) cubre el resto del

Opistosoma, presenta numerosas setas finas.

Estigma (Stg) se abre entre las coxas 111 y 1v;

peritrema (P) se dirige hacia delante, hasta el

margen posterior de la coxa 1. Abertura anal

pequeña, ubicada en el extremo posterior del

idiosoma, rodeada por tres pares de setas ana-

les (a¡-a3). Longitud del idiosoma: 420 a 550

um.

Se estudió un solo ejemplar macho. Proba-

blemente corresponda a Eugamasus butleri

Hughes, 1948, determinación que podrá ser

confirmada cuando se disponga de más mate-

rial.

Los ácaros de la familia Parasitidae son de

vida libre. La especie E. butleri ha sido registra-

da en detritus de pisos y en polvo tamizado de

cerveza (Hughes, 1973). Probablemente es

una especie depredadora sobre otros ácaros

cohabitantes. Se le encuentra asociada a Tyro-

phagus putrescentiae, Glycyphagus destructor y

Cheyletus eruditus, donde constituye alrededor

del 5% de la población.

DISTRIBUCIÓN

Inglaterra, Irlanda del Norte y Escocia. En

Chile ha sido determinada para Punta Arenas

(Fig. 69).

sp.

Fic. 67. Vista dorsal del macho de Eugamasus

PROSTIGMATA

BDELLIDAE

Spimbdella sp.

Figs. 70-72

Hembra (Fig. 70)

Cuerpo rojo, alargado, más ancho entre patas

1 y rv; cutícula cubierta por finas estriaciones

paralelas, excepto el “collar” en la base del

gnatosoma. Gnatosoma largo y delgado, cerca

de un tercio de la longitud del idiosoma. Que-

líceros (Ch) con dos setas en su superficie ex-

terna, una en la base del tercio anterior y otra

en el tercio posterior. Región ventral del hi-

postoma (Hyp) con dos setas, ubicadas al mis-

mo nivel que las setas del quelícero. Pedipal-

pos más largos que el hipostoma; basifémur

(BF) más largo que los tres segmentos siguien-

tes juntos, con cinco setas dorsales, cuatro dis-

tribuidas a lo largo de la mitad apical del costa-

do interno y una cerca del ápice en el costado

externo, en el lado ventral hay cuatro setas en

el cuarto basal; resto del pedipalpo sin setas

ventrales; telofémur con una sola seta dorsal

externa; gena con tres setas dorsales distribui-

das en triángulo; tibio-tarso (77) tan largo

como el telofémur (TF) y gena (G) juntos, lige-

ramente expandido en la parte distal, ápice

con dos largas setas de diferente longitud, la

interior más corta, entre ambas un solenidio

corto y romo. Propodosoma con dos pares de

ojos (0) dispuestos a la altura de las patas 11,

próximos al borde, separados entre sí por una

distancia igual a su diámetro; cuatro setas dor-

sales: seta anterior (sensila 11) más larga que la

seta posterior (sensila sce), seta vertical externa

(ve) corta, su longitud es inferior a un tercio de

la vertical interna (vz), la seta escapular interna

(sci) ligeramente más larga que ve, implantada

aproximadamente a la altura de sce y separada

de ésta por una distancia aproximadamente

igual al largo de sei. Histerosoma con diez setas

dorsales de similar longitud: dos humerales

(hi, he) alineadas a la altura de la pata 111, la

distancia entre ellas es igual a la longitud de las

setas; dorsales d, y da alineadas con ha; seis

setas ubicadas en el extremo posterior del his-

terosoma, d3 alineada con saz, seta sacra exter-

na (sae) a la altura de sai, separadas por la

mitad de la longitud de la seta; tres setas posta-

nales (pa, - paz) agrupadas e insertas en trián-

gulo. Todas las setas dorsales levemente plu-

mosas.

Patas espinosas y largas, especialmente las

patas 1v; tibias de las patas 1, 111 y 1v con soleni-

dio q largo, no sobrepasa el ápice del tarso;

todos los tarsos con dos uñas.

En vista ventral (Fig. 71), abertura genital

(AG) ovalada, ubicada posterior a las coxas Iv;

dos placas genitales grandes, cada una cuatro

veces más larga que ancha; nueve setas genita-

les (g1 - ga) de similar longitud, dispuestas en

línea a lo largo de cada placa genital; un nú-

mero variable de setas paragenitales (pg) ubi-

cadas anterior y lateralmente a la abertura

genital. Uroporo (U) terminal, alcanza el ex-

tremo posterior del idiosoma; dos setas anales

(a; - as): a, entre la abertura genital y el uropo-

ro, ay posterior y ligeramente desplazada ha-

cia el costado. Longitud del idiosoma: 780 um.

Se estudió un ejemplar hembra. Posible-

mente corresponde a Spanibdella bifurcata

Atyeo, 1960, determinación que deberá ser

confirmada cuando se disponga de más mate-

rial y de machos.

Los ácaros de la familia Bdellidae son acti-

vos, rápidos, predatores sobre pequeños ar-

trópodos y sus huevos. Al parecer se presen-

tan en todos los hábitats terrestres donde exis-

ta alimento disponible (Atyeo, 1960). Algunas

especies de Spinibdella se han encontrado en

depósitos de harina y granos, probablemente

se alimentan de otros ácaros (Hughes, 1973).

La especie cuyo ejemplar se estudió se en-

contró asociada con Glycyphagus domesticus, Ty-

rophagus putrescentiae y Chortoglyphus arcuatus,

constituyendo menos del 1% de la población.

Spinibdella bifurcata Atyeo ha sido determi-

nada para Inglaterra, Norte de Irlanda,

U.S.A. y México (Atyeo, 1960; Hughes, 1973).

El espécimen estudiado fue encontrado en

Concepción-Chile y constituye el primer re-

gistro para el país de la familia y el género (Fig.

72).

: E

ÑA

Fic. 70. Vista dorsal de la hembra de Spinabdella sp.

MENE

[100

y SS 7

AT Y)

“y / ES

El. 71. Vista ventral de la hembra de Spuubdella sp. Fic. 72. Distribución geográfica conocida de Spuubdella sp.

en Chile.

CHEYLETIDAE

Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794)

Figs. 73-77

Acarus lepidopterorum Shaw, 1794, 6: 187.

Cheletomorpha lefadopterorum (Shaw). Oude-

mans, 1937: 1115-1117; Eyndhoven, 1964,

11(136): 53-60; Summers y Price, 1970: 49-

52; Hughes, 1973: 248-250.

Cheyletus venustissimus Koch, 1839, fasc. 23.

Cheletomorpha venustissima (Koch). Oudemans,

1904, 1(18): 162; 1906a, 19: 144-153; Roh-

dendorf, 1940, 42: 92-94; Eyndhoven,

1964, 11(136): 53-60.

Cheyletus longipes Megnin, 1878, 14: 416-441.

Cheyletus seminivorus Packard, 1878: 1-715.

Cheyletus rufus Hardy, 1933. (-n André, 1933,

1916): 352.

Cheletophyes tatami Hara, 1955, 25: 69-70; Vol-

gin, 1969: 101: 1-432.

Cheletophyes knowltoni Beer y Dailey, 1956, 38,

1(5): 393-437.

Idiosoma amarillo-rojizo; cubierto por dos

placas dorsales finamente puncturadas. Setas

dorsaies cortas, pectinadas. Protegmen (Pr) se

extiende hacia adelante cubriendo la mayor

parte del rostro (Ro); tres pares de setas, un

par dorsal, un par ventral y un par de setas

muy cortas en la región de la boca. Tegmen

(T') más ancho en la base que en el ápice. Peri-

trema (P) arqueado, con divisiones inconspl-

cuas.

Placas propodosomal (PP) e histerosomal

(PH) grandes, más anchas que largas. Placa

propodosomal con cuatro setas, dispuestas en

cada borde lateral, tres en el tercio anterior y

una en el tercio posterior; placa histerosomal

con cinco setas en cada borde lateral, dispues-

tas como un par en el tercio anterior, un par

en el tercio mediano y una seta en el tercio

posterior; placas dorsales con cinco setas dor-

somedianas (sdm) aberrantes cortas y lisas, dis-

puestas en línea, dos en la placa propodoso-

mal y tres en la histerosomal; una seta escapu-

lar (sc) ubicada dorsolateralmente entre las

patas 11 y 111; una seta posterior (pa) en el

extremo dorsal-posterior del idiosoma.

Apice del tarso del pedipalpo con dos setas

internas en forma de cepillo con numerosos

dientes finos y dos setas lisas; uña tibial (7C)

larga, más larga que la tibia, borde interno liso

o con pequeños dientes, extremo basal interno

con l a 2 protuberancias dentiformes; fémur

ancho, borde externo subgloboso, con tres se-

tas dorsales pectinadas y dos setas ventrales

lisas.

Patas largas, a lo menos iguales a la longitud

del idiosoma; patas 1 más largas que las restan-

tes, longitud igual a una y media vez la longi-

tud de las patas 11 y 111; en posición normal se

mantienen dirigidas hacia adelante formando

un ángulo recto con el eje longitudinal del

cuerpo; pretarsos 1 (PT) sin uñas, ápice con

una larga seta segmentada, dos a cuatro veces

la longitud del pretarso; pretarsos 11, 111 y 1V

con una uña apical, sin seta segmentada; tar-

sos 1 con dos largas setas addorsales (tc) seg-

mentadas, más largas que el tarso; resto de los

tarsos sin setas addorsales; solenidio y en pata

1 aproximadamente igual a un tercio de la

longitud de su seta anexa o soporte (SS); setas

de las patas bipectinadas, similares a las setas

dorsolaterales del idiosoma.

Macho (Fig. 73)

Dorso del idiosoma ovalado, más ancho entre

las patas 11 y 11. Extremos del peritrema (P)

terminan lejos del borde posterior del teg-

men. Uña tibial del pedipalpo (7C) con borde

interno liso y dos protuberancias dentiformes

en el tercio basal; una de las setas dentadas del

tarso es recurvada en el ápice. Primer par de

patas del doble de la longitud del ancho mayor

del idiosoma; seta segmentada apical del pre-

tarso 1 cuatro veces más larga que el pretarso;

setas addorsales (tc) casi el doble de la longitud

del tarso. Abertura genital (AG) dorsal, alarga-

da, alcanza el extremo posterior del idiosoma,

rodeada por tres pares de setas genitales (g;-

g3) cortas, alineadas y equidistantes. En vista

ventral (Fig. 74), apodemas de las patas 111 y 1v

separados; patas 1 y 1v con setas coxales (scx);

patas 11 y 111 con una sola seta; idiosoma con

tres pares de setas cortas y lisas, alineadas,

dispuestas en la línea medio-ventral (S 1-S 111):

S II y S II más próximas entre sí que $ 1] y S 1.

Abertura anal (44) subtriangular, bordes re-

dondeados, no alcanza el extremo posterior

del idiosoma, con cuatro pares de setas anales

(a): a, y as juntas en el tercio anterior, d3 y 44

juntas en el borde posterior de la abertura

anal. Longitud del idiosoma: 314 a 427 jm.

HeEmBRA (Fig. 75)

Dorso del idiosoma subcircular, ligeramente

más ancho entre las patas 1 y 111; con una seta

dorsal adicional (da) en el borde anterior de la

placa histerosomal, equidistante entre la línea

medio-dorsal y el borde lateral. Extremos del

peritrema (P) muy próximos al borde poste-

rior del tegmen (7). Uña tibial del pedipalpo

(TC) con borde interno dentado y una protu-

berancia dentiforme en el tercio basal; setas

dentadas del tarso con el ápice simple. Primer

par de patas una y media vez el ancho mayor

del idiosoma; seta segmentada apical del pre-

tarso 1 el doble de la longitud del pretarso;

setas addorsales (tc) una y media vez la longi-

tud del tarso. En vista ventral (Fig. 76), apode-

mas de las patas 111 y 1v unidos; coxas con una

seta coxal (scx), la primera (scx) el doble de la

longitud de las setas restantes. Cinco pares de

setas en la línea medio-ventral (S 1 - $ V): SI, S

II y SHIT equidistantes, $ 111, SIV, S V también

equidistantes entre sí pero a la mitad de la

distancia de las tres anteriores. Uroporo (U)

simple, elongado, alcanza el extremo poste-

rior del cuerpo; tres pares de setas anales (a;-

a3) cortas, alineadas y equidistantes. Longitud

del idiosoma: 450 a 550 pum.

Cheletomorpha lepidopterorum se ha encontra-

do en alas de polilla, nidos de gorrión, corteza

de pino y ocasionalmente asociado con otros

ácaros en polvo de habitación (Hughes, 1973).

En Chile se le ha colectado en polvo de

habitación asociada con Cheyletus eruditus, Gl)-

cyphagus destructor y Tyrophagus putrescentiae,

donde constituye cerca del 20% de la pobla-

ción.

DisTRIBUCIÓN

Cosmopolita. Se registra por primera vez en

Chile, ha sido determinada para Dichato, Tal-

cahuano, Concepción y Valdivia (Fig. 77).

Fic. 73. Vista dorsal del macho de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw).

FiG. 74. Vista ventral del macho de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw).

Fic. 75. Vista dorsal de la hembra de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw).

Fic. 76. Vista ventral de la hembra de Cheletomorpha

lepidopterorum (Shaw).

Fic. 77. Distribución geográfica conocida de C. lepadoptero-

rum en Chile.

Cheyletus eruditus (Schrank, 1781)

Figs. 78-82

Acarus eruditus Schrank, 1781: 513.

Cheyletus eruditus (Schrank). Oudemans, 1903,

46: 93-134; 1906a, 19: 36-218; Newstead y

Duval, 1918, 2: 1-52; Rohdendorf, 1940,

42: 69-98; Haarlow, 1942, 1281: 171; Ba-

ker, 1949, 99(3238): 267-320; Beer y Dai-

ley, 1956, 38, 1(5): 393-437; Hughes,

1961b, 9: 1-287; Summers y Price, 1970:

24-25.

Eutarsus cancriformas Hessling, 1852, 1(5): 255-

259; Oudemans, 1938, 81: 75.

Cheyletus seminivorus Packard, 1878: 1-715;

Beer y Dailey, 1956, 38, 1(5): 393-437.

Cheyletus eburneus Hardy, 1867 (:n André,

1933, 19(6): 336-344; Baker, 1949, 99

(3238): 267-320.

Cheyletus ferox Banks, 1906a, 7: 133-142; Ba-

ker, 1949, 99(3238): 267-320.

Cheyletus rabiosus Rohdendorf, 1940, 42: 69-

98; Hughes, 1961b, 9: 1-287.

Cheyletus butlerr Hughes, 1961b, 9: 1-287.

Cheyletus dodd: Baker, 1949, 99(3238): 267-

320.

Idiosoma marrón-amarillento; con dos placas

dorsales que no cubren totalmente la superfi-

cie, separadas por una franja transversal de

tegumento estriado, de ancho variable. Setas

dorsales cortas y pectinadas. Protegmen indis-

tinto. Tegmen (7) más ancho en la base que

en el ápice. Peritrema (P) en forma de M,

rama descendente con cinco segmentos.

Placa propodosomal (PP) más ancha que

larga, margen posterior recto, con cuatro setas

dispuestas en cada borde lateral, tres en el

tercio anterior y una en el tercio posterior; con

O sin setas centrales; placa histerosomal (PH)

triangular, vértices redondeados, margen an-

terior recto, con tres a cuatro setas en cada

borde lateral, con o sin un par de setas centra-

les; seta humeral (4) ubicada dorsolateralmen-

te entre las patas 1 y 111, más cerca de las patas

11; con una seta dispuesta entre las placas pro-

podosomal e histerosomal; con dos pares de

setas posteriores (pa;, pas) de longitud va-

riable.

Apice del tarso del pedipalpo con dos setas

internas en forma de cepillo, con numerosos

dientes finos y dos setas lisas; uña tibial (7C)

larga, más larga que la tibia, borde interno liso

o con pequeños dientes, extremo basal inter-

no con dos protuberancias dentiformes; fé-

mur con una seta dorsal pectinada y dos setas

ventrales lisas.

Patas tan largas o levemente más cortas que

la longitud total del idiosoma; todos los tarsos

elongados; tarso 1 con dos setas addorsales (tc)

lisas, largas, dos veces más largas que la longi-

tud del pretarso; tarsos 11, 111 y 1v con dos setas

dorsales lisas, tan largas como el pretarso; so-

lenidio w levemente más largo que su seta

soporte (SS); setas de las patas bipectinadas,

similares a las setas dorsales del idiosoma.

Macho (Fig. 78)

Dorso del idiosoma ovalado, más ancho entre

las patas 1 y 111. Peritrema (P) con rama trans-

versal levemente arqueada. Uña tibial del pe-

dipalpo (TC) con borde interno liso; seta inter-

na del pedipalpo con 7 dientes, seta externa

con 9 dientes. Placas dorsales cubren cerca del

90% de la superficie total del idiosoma; placa

propodosomal más ancha en su base, con már-

genes anterior y posterior rectos; con cuatro

setas en cada borde lateral, dispuestas: tres en

el tercio anterior y una en el tercio posterior;

dos setas centrales (scP) ubicadas en el tercio

posterior de la placa; placa histerosomal se

extiende hasta el margen posterior del idioso-

ma, con cuatro setas en cada borde lateral, una

en el tercio anterior, dos en el tercio medio y

una en el tercio posterior; una seta dorsome-

diana (sdm) ubicada en la región anterior de la

placa. En vista ventral (Fig. 79), coxas 11 y 111

levemente separadas; coxas 1, 111 y 1v con dos

setas coxales (scx) desiguales en longitud; co-

xas 11 con una seta coxal; idiosoma con cinco

pares de setas lisas (S 1 - S V): SII, SIV y S V

más próximas entre síque S / y S II. Abertura

genito-anal ovalada, ubicada en el extremo

posterior del idiosoma, con tres pares de setas

cortas y espiniformes, equidistantes entre sí.

Longitud del idiosoma: 280-320 um.

HemBRA (Fig. 80)

Dorso del idiosoma suocircular. Rama trans-

versal del peritrema arqueada. Uña tibial del

pedipalpo (7C) con borde interno dentado;

seta interna con 14 dientes y seta externa con

13 dientes. Placa propodosomal ampliamente

separada de la placa histerosomal. En vista

ventral (Fig. 81), coxas 1 y 1 separadas por

una distancia igual a una y media vez el ancho

de la coxa 111; todas las coxas con dos setas

coxales (scx): sex] y scxz largas, más largas que

scx3 y scxa; idiosoma con cinco pares de setas

lisas (S 1 - S V): S HT ubicada a la media distan-

cia entre S 1, $ II y SIV, S V, estas últimas más

próximas entre sí que $ / y $ 11. Uroporo (U)

terminal, alcanza el extremo posterior del

idiosoma; tres pares de setas anales (a,-a3): a;

ubicada en la región anterior del uroporo,

próxima a $ V, as y az equidistantes, ubicadas

en el tercio medio de la abertura; con dos

pares de setas subterminales (sst) posteriores al

uroporo. Longitud del idiosoma: 450-620

pm.

Cheyletus eruditus se ha encontrado en pro-

ductos almacenados y desechos de fábricas,

pueden vivir regularmente en nidos de aves y

mamíferos e incluso en polvo de habitación.

Es un depredador activo de otros ácaros y de

estados inmaduros de polillas y psócidos

(Hughes, 1973).

En Chile se le ha colectado en polvo de

habitación asociada principalmente con Aca-

rus siro, Glycyphagus destructor y Cheletomorpha

lepidopterorum, donde constituye cerca del 35%

de la población.

DISTRIBUCIÓN

Cosmopolita. En Chile ha sido determinada

para Coquimbo, La Serena, Vicuña, Ovalle,

La Cruz, Valparaíso, Viña del Mar, Quilpué,

Santiago, San Bernardo, Curicó, San Javier,

Linares, Chillán, Dichato, Talcahuano, Con-

cepción, Arauco, Temuco, Pitrufquén, Villa-

rrica, Panguipulli, Valdivia, Purranque, Chi-

loé y Punta Arenas (Fig. 82).

ral del macho de Cheyletus eruditus (Schrank).

79. Vista vent

Fic.

1 dorsal de la hembra

Fic. 82. Distribución geográfica cono:

Chile.

uditus

tral de la hembra de Cheyletus er

16. 81. Vista ven

(Schrank).

Eucheyletia hardy Baker, 1949

Figs. 83-85

Eucheyletia hardy: Baker, 1949, 99(3238): 296-

297, Summers y Price, 1970: 33, fig. 26;

Hughes, 1973: 251.

HemBRA (Fig. 83)

Idiosoma marrón-amarillento; con dos placas

dorsales que no cubren totalmente la superfi-

cie, separadas por una franja transversal de

tegumento estriado. Protegmen (Pr) cubre la

mayor parte del rostro (Ro); con dos pares de

setas lisas, el par dorsal más corto que el ven-

tral. Tegmen (7) dos y media vez más ancho

en la base que en el ápice, con una seta ventral

lisa y larga. Peritrema (P) formado por seis

segmentos cortos.

Placas propodosomal (PP) e histerosomal

(PH) más anchas que largas, con finas perfora-

ciones. Placa propodosomal con cuatro setas

dorsales (d) escamiformes y serradas, dispues-

tas en los bordes laterales, d,, de y dy equidis-

tantes, dy ligeramente más distante; con tres

setas dorsomedianas (sdm) a cada lado de la

placa, expandidas, profusamente microlobu-

ladas, insertas en triángulo; placa histeroso-

mal con dos setas escamiformes y serradas en

los bordes laterales, con tres setas dorsomedia-

nas (sdm) similares a las de la placa propodoso-

mal, ordenadas en fila de a tres a cada costado

y equidistantes. Con una seta escamiforme y

serrada ubicada entre las placas dorsales, des-

plazada hacia el costado y dos setas, similares a

la anterior, ubicadas por detrás de la placa

histerosomal en el tercio posterior del idio-

soma.

Apice del tarso del pedipalpo con dos setas

en forma de cepillo, seta externa con 17 dien-

tes y seta interna con 35 dientes aproximada-

mente, y dos setas lisas; uña tibial (7C) larga,

más larga que la tibia, extremo basal interno

con dos protuberancias dentiformes; fémur

ancho, borde externo subgloboso, tegumento

densamente cubierto por pequeñas microes-

pinas, con dos setas dorsales escamiformes se-

rradas y dos setas ventrales delgadas y lisas.

Patas delgadas, más cortas que el idiosoma;

patas 111 ligeramente más cortas que las restan-

tes; pretarsos (PT) con dos uñas; todos los

tarsos (T) alargados, sin setas escamiformes

serradas, con setas dorsales y ventrales lisas,

tarso 1 con solenidio w más corto que la seta

soporte (55); tibia 1 con tres setas dorsales esca-

miformes serradas, una seta ventral lisa y una

seta levemente pectinada ventrolateral; tibia 11

con dos setas dorsales escamiformes serradas

y dos setas ventrales lisas; tibia 111 con setas

dorsales y una ventral, escamiformes serradas

y una seta ventral lisa; resto de las patas con

setas escamiformes serradas.

En vista ventral (Fig. 84), todas las setas

lisas; cOxas 1, 11 y 11 con una seta coxal (scx),

coxa Iv con dos setas coxales; idiosoma con

ocho pares de setas ventrales ($) S I lateral y

anterior a coxa 1, $ 11] ubicada entre coxas 1 y

1, S 1V inserta en la región medial del espacio

comprendido entre coxas 11 y 111, $ IV a S VIH

insertas posteriores a la coxa 1v formando un -

triángulo. Placa genitoanal (PGA) ovalada,

ubicada en el tercio posterior del idiosoma,

con cinco setas lisas a cada lado de la placa: una

en la región anterior, una en la región media y

tres reunidas en línea en la región posterior de

la placa; con una seta postanal (pa) escamifor-

me, serrada, inserta por detrás de la placa

genitoanal, en el borde posterior del idioso-

ma. Longitud del idiosoma: 400-450 um.

MacHo

Desconocido

Eucheyletia hardyi se ha encontrado en nidos

de Neotoma micropus (Mammalia, Rodentia,

Cricetidae) (Baker, 1949: 297).

En Chile se le ha colectado en polvo de

habitación asociada con Chortoglyphus arcuatus,

Gohieria fusca, Glycyphagus destructor y Cheyletus

eruditus donde constituye cerca del 20% de la

población.

DISTRIBUCIÓN

Texas. U.S.A. (Baker, 1949: 297). Se registra

por primera vez en Chile en Talcahuano,

Concepción y Valdivia (Fig. 85).

FiG. 83. Vista dorsal de la hembra de Eucheylena hardy Baker.

/ «SÁ

0 N a ÚS

y ES [ogum

Fic. 84. Vista ventral de la hembra de Eucheyleta hardy

Baker.

FIG. 85. Distribución geográfica conocida de E. hardyi en

Chile.

100

DISCUSION Y CONCLUSION

La información reunida en este primer estu-

dio de la población acarológica del polvo de

habitación en Chile, implica un sustancial

aporte al conocimiento de este grupo en el

país, cuya significación sanitaria ha sido fre-

cuentemente resaltada por numerosos au-

tores.

Desde una perspectiva biogeográfica cons-

tituye un importante acopio de información

inédita, tanto por incorporar nuevos registros

de especies animales a la fauna chilena como

por agregar, al mismo tiempo, una distribu-

ción geográfica que, aunque necesariamente

incompleta, constituye un punto de partida

importante para futuros trabajos.

Los ácaros, por su pequeño tamaño y su

compleja morfología, conforman un grupo

difícil de manejar para personas insuficiente-

mente entrenadas en la materia; sin embargo,

su alto interés práctico obliga a reconocer las

especies como un elemento indispensable en

estudios epidemiológicos y de otras índoles.

Por esta razón los autores han pretendido en-

tregar en este trabajo, además de un aporte

científico de cierto rigor, un instrumento que

facilite el reconocimiento de las especies.

La incorporación de abundantes figuras

originales detalladas, de ambos sexos, en vista

dorsal y ventral, facilitan su uso. La simple

clave pictórica, incorporada como un instru-

mento de fácil manejo, permitirá un reconoci-

miento específico en condiciones simples de

laboratorio.

El uso de técnicas adecuadas de recolecta y

montaje será, de todas maneras, necesario pa-

ra permitir su empleo; del mismo modo que la

disponibilidad de instrumental óptico ade-

cuado.

Futuros trabajos, realizados con métodos

similares al actual, aportarán nueva informa-

ción en relación a la determinación de otras

especies y ampliación de la distribución geo-

gráfica de las ya registradas.

Estudios con énfasis en muestreos más di-

versificados, en relación a sustratos, a épocas

de colecta y a técnicas de recolección, irán

conformando, con el tiempo, un panorama

informático de mayor precisión.

Los autores esperan que este trabajo esti-

mule la labor de otros investigadores que,

aunque interesados principalmente en otras

disciplinas, necesiten disponer de informa-

ción acarológica.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen especialmente al Dr. Juan Grau Vilaru-

bias, por su sugerencia y estímulo para iniciar este estudio y por

su permanente interés y colaboración. A la Dra. Aide Araujo-

Fontaine, por sus valiosas informaciones sobre métodos de culti-

vo. A los Dres. George W. Warthon y Donald Johnston, por su

apoyo en la parte sistemática. A la Licenciada Libia Ulloa, por su

colaboración en el análisis de las muestras, desarrollo de las

crianzas, montaje de especímenes y confección de dibujos origi-

nales; a los señores Alfredo Wendt y Arturo Rivera, por su

colaboración en el establecimiento y mantención de los cultivos. A

la señora Lily Yáñez y al señor José Bustos, por sus trabajos de

dactilografía y dibujo técnico, respectivamente.

Este trabajo corresponde a los primeros resultados del Proyecto

de Investigación N? 3.08.02 patrocinado por la Dirección de

Investigación de la Universidad de Concepción-Chile, denomina-

do “Acaros del polvo de las habitaciones en Chile”.

101

BIBLIOGRAFIA

ANDRÉ, M. 1933. Notes sur les Acariens observés dans les

magasins regionaux de Tabacs. Ann. des Ephiphytes,

Paris 19(6): 331-356.

ARAuUjo, A. 1974. Acariens et allergie a la poussiére. Essai

de determination des IgE spécifiques vis-a-vis des aca-

riens (Dermatophagordes pteronyssinus y Dermatophagodes

farmae) par le méthode des immunoadsorbants. Uni-

versité Louis Pasteur, Faculté de Médecine de Stras-

bourg N” 5 (Tesis doctoral).

ATYEO, W. T. 1960. A revision of the mite family Bdelli-

dae in North and Central America (Acarina, Prostig-

mata). The University of Kansas Science Bulletin

40(8): 424-435.

Baker, E.W. 1949. A review of the mites of the family

Cheyletidae in the United States National Museum.

Proc. U.S. Nat. Mus. 99(3238): 267-320.

Baker, E. and G.W. WHArTON. 1952, An introduction to

Acarology. The Macmillan Company, New York, 465

Banks, N. 19064. Description of some new mites. Proc.

Ent. Soc. Wash. 7: 133-142.

Banks, N. 1906b. A revision of the Tyroglyphidae of the

United States. Tech. Ser. U.S. Bur. Ent. 13: 15-16, figs.

20-25, 29.

BarriGa, O. y H. Reves. 1965. Identificación de Glycypha-

gus domesticus en Chile (Acarina). Bol. Chil. Parasitolo-

gía 20(4): 123-124.

Beer, R.E. and D.T. Darey. 1956. Biological and syste-

matic studies of two especies of cheyletid mites, with a

description of a new species (Acarina, Cheyletidae).

Univ. Kansas Sci. Bull. 38, 1(5): 393-437.

BERLESE, A. 1897, Acari, Myriapoda et Scorpiones Hucus-

que in Italia Reperta. Patavi 1. Cryptostigmata. Fasc.

89, N” 10.

BerLese, A. 1918a. Intorno agli Uropodidae. Redia 13:

7-16.

BERLESE, A. 1918b. Centuria quatra dí Acari nuovi. Redia

13: 115-196.

BOGDANOFF, A. 1964. Deux acariens, trouves par M. Sche-

remetewsky sur 'homme. Bull. Soc. Imp. Nat. Mos-

cow. 341-348, pl. vu.

BoLLAERTS, D., et R. BreEnv. 1951. Les acariens nuisibles

aux matieres entreposées. Rev. Agric. Brux. 4(6): 738-

764.

Bronswijk, J.E. van., A.W.M. pe Cock and S. OsHIMa.

1973. The genus Bloma Oudemans (Acari: Glycypha-

gidae). I. Description of Bloma tropicalis sp. n. from

house dust in tropical and subtropical regions. Acaro-

logia, 15(3): 477-489,

BronswiKk, J.E. van and A.W. Cock. 1973. The genus

Bloma Oudemans (Acari: Glycyphagidae). 11. Compa-

rison of its species. Acarologia 14(3): 490-505.

CHANT, D.A. 1963. The subfamily Blattisocinae Garman

(=Aceosejinae Evans) (Acarina: Blattisocidae Gar-

man) (= Aceosejidae Baker and Wharton) in North

America, with descriptions of new species. Canadian

Journal of Zoology 41: 243-305.

CUNLIFFE, F. and E.W. Baker 1953. A guide to the preda-

tory phytoseiid mites of the United States. Pinellas

Biol. Lab. Publ. 1: 28.

102

CUTCHER, J. 1973. The critical equilibrium activity of non-

feeding Tyrophagus putrescentiae (Acarina: Acaridae).

Ann. Entomol. Soc. Amer. 66(3): 609-611.

Davis, A.C. 1944. The mushroom mite (Tyrophagus lnmtne-

n (Osborn)) as a pest of cultvate mushrooms. Tech.

Bull. U.S. Dep. Agric. 879: 7, figs. 4-6.

De Geer, C. 1778. Mémories pour servir a l'histoire des

Insectes. Vol. 7 Stockholm.

De Leon, D. 1963. A new Dermatophagordes: 1 prevents the

rising of selfrising flour (Acarina: Epidermoptidae).

Florida Ent. 46: 247-250.

Deschiens, R. 1951. L'acariase de Pappareil respiratrice

chez les primates et chez homme. Ann. Inst. Pasteur

Paris 80: 107-147.

Dusbabek, F. 1975. Population structure and dynamics of

the house dust mite Dermatophagordes farmae (Acarma:

Pyroglyphidae) in Czechoslovakia. Folia Parasit. 22:

219-231.

Evans, G.O. 1958. A revision of the British Aceosejmae

(Acarina: Mesostigmata). Proc. Zool. Soc. London

131: 177-229.

EyxbHoven, G.L. van. 1963. The Ruzoglyphus echinopus of

Fumouze and Robin. Mitt. Schweiz. Ent Ges., 36: 48-

49.

EvnbHoven, G.L. van 1964. Cheletomorpha lepidopterorum

(Shaw, 1794) (= Ch. venustissima) (Acari, Cheyletidae)

on Lepidoptera. Zool. Mus. Amsterdam, 11(136): 53-

60.

Farx, A. 1966. Nouvelle description de Dermatophagordes

pteronyssinus (Trouessart, 1897). Importance de cet

acarien en pathologie humaine (Psoroptidae: Sarcop-

uformes). Acarologia 8(2): 302.

Farx, A. 1967. Deux nouvelles especes de Dermatopha-

goidinae. Rattachement de cette sous-familie aux Py-

roglyphidae (Sarcoptuformes). Acarologia 9: 870-881.

Fumouze, A. et C. Robin. 1868. Observation sur une

nouvelle espece d'Acariens du genre Tyroglyphus. ].

Anat. Phys. 5(3): 287-306.

Gaun, J. et]. Moucher. 1959. Acariens plumicoles (Anal-

gesoidea) des oiseaux du Cameroun. Ann. Parasitol.

Hum. Comp. 34: 149-208, 452-545.

GonzÁLez, R.H., P. ARRETZ y L.E. Campos. 1973. Catálo-

go de las plagas agrícolas de Chile. Universidad de

Chile, Facultad de Agronomía. Publicación en Cien-

cias Agrícolas, 2: 34.

GribELET, D. etP.H. LeBRUN. 1973 .Contribution a Pétude

ecologique des acariens des poussieres de maison. Aca-

rologia 15(3): 461-476.

GrirErTHS, D.A. 1964. A revision of the genus Acarus L.,

1758 (Acaridae: Acarina). Bull. Brit. Mus. (Nat. Hist).

Zool. Lond. 2(6): 413-464.

HaarLov, N. 1942. A morphologic, systematic, ecological

investigation of Acarina and other representatives of

the microfauna of the soil around Morkelford,

Northeast Greenland. Medd. Gronland 1281: 171.

HaarLov, N. and M. ALan1. 1970. House-dust mites Der-

matophagordes pteronyssmus (Trt.), D. farmae Hughes,

Euroglyphus mayner (Cooreman) Fain in Denmark (Aca-

rina). Ent. scand. 1: 301-306.

HaLmatr, Z. and F. ALEXANDER. 1971. Studies on the hou-

se-dustallergen. Allergie und Immunologie 17(1): 69-

701:

Hart, €. and Mc. Martos. 1971. Collecting and rearmg

Dermatophagowdes farmae Hughes, a mite from house-

dust. Annals of Allergy 9: 81-85.

Hara, Jun. 1955. A new species of cheyletid mite found

on tatami, japanese rice straw mattng. Japa. Jour.

Expt. Med. 25: 69-70.

HessLING, TH. VON. 1852. Einige notizen úber den Weich-

selzopf. Illustr. Med. Zeit. 1(5): 255-259.

Hirst, S. 1912. Report on the mite causing copra itch. J.

Trop. Med. Hyg. 15: 374-375, figs. 1, 2.

Huches, A.M. 1948. The mites associated with stored

food products. Ministry of Agriculture and Fisheries

London, 168 pp.

Hucnes, A.M. 196la. Terrestrial acarina 111. Acaridiae im

Fridriksson, A, and Tuxen, S.L. The Zoology of Ice-

land 3(57c): 1-12.

Huches, A.M. 1961b. The mites of Stored food. Tech.

Bull. Minist. Agric. Lond. N” 9: 1-287.

HuGHEs, A.M. 1973. The mites of stored food and houses.

Ministry of Agriculture, Fisheries and Food. Techni-

cal Bulletin 9: 400 pp.

Isi, A. and J. MivamoTO. 1973. Biological and bioche-

mical properties of the house-dust mite extract, Derma-

tophagoides farimae. Japan J. Exp. Med. 43(6): 495-507.

Jary, S.G. 1937. A note on Tyroglyphus longior var. castella-

m (Hirst). J.S.E. Agric. Coll. Wye 40: 130.

Ken, B. 1973. The common house dust mites of the genus

Dermatophagorwdes (Acarina Phroglyphidae). Vector

Views 20(5): 37-45.

Koch, C.L. 1839. Deutschlands crustaceen, Myriapoden

und Arachniden. Fasc. 23 Regensberg.

KRAMER, P. 1881. Uber Milken. Zeitschr. Ges. Naturwiss.

54: 417-452, pls. 3-4.

LinNE, C. 1758. Systema naturae per regna tria naturae,

secundum classes, ordines, genera, species. cum cha-

racteribus, differentiis, synonymis, locis. Vol. 1 Hol-

miae.

LomBARDINI, G. 1944. Tyroglyphus nadinus n. sp. Redia 30:

43-69, figs. 1-2.

Manson, D.C. 1972. A contribution to the study of the

genus Rhizoglyphus Claparede, 1869 (Acarina: Acari-

dae). Acarologia, 13(4): 621-650.

MaunsELL, K., D. WrarTH and A.M. CUNNINGTON. 1968.

Mites and house-dust allergy im bronchial asthma. The

Lancet, pp. 1267-1269.

Mauri, R. 1982. Algunos ácaros nuevos para la fauna

argentina. Rev. Soc. Ent. Argentina, 41(1-4): 93-96.

MécnIN, P. 1878. Mémorie sur un nouveau groupe d'Aca-

riens, les Cheyletides parasites. Sour. de P'Anat. et

Physiol. (Paris) 14: 416-441.

MIYAMOTO, T., S. OsHima, T. Isnizaki and S. Sato. 1968.

Allergenic identity between the common foor mite

(Dermatophagowdes farinae Hughes, 1961) and house

dust as a causatue antigen in bronchial asthma. ].

Allergy, 42(1): 14-28.

Morse, L.E. 1974. Computer programs for Specimens

Identification, Key construction and description

printing using Taxonomic data matrices. Publications

of the Museum Mich. St. Univ. Biological Series, 5(1):

1-128.

103

Mumcuocre, Y. 1976. House dust mites in Switzerland. £.

Distribution and Taxonomy. J. Med. Ent. 13(3): 361-

373.

Muñoz, V. 1981. Primer hallazgo del ácaro Dermatopha-

goides pteronyssmus de polvo de habitación, en Santiago

de Chile. Parasitología al Día, 5(9): 68-69. Ed. Soc.

Chilena Parasitol., Santiago, Chile.

Nessirr, H.H.J. 1945. A revision of the family Acaridae

(Tyroglyphidae), order Acari, based on comparative

morphological studies. Pt. 1. Historical, morphologi-

cal and genera taxonomic studies. Canada J. Res. D 23:

139-188.

Nessrrr, H.H.J. 1951. A taxonomic study of the Phyto-

selinae (family Laelaptidae) predaceous upon Tetra-

nychidae of economic importance. Zool. Verhandl.

12: 1-64.

NewsTEaD, R. and H.M. Duvaz. 1918. Bionomic, mor-

phological and economic reports on the acarids of

stored grain and flour. Rep. Grain Pests Comm., Roy.

Soc. London 2: 1-52.

OsbBORN, H. 1893. A new mite infecting mushrooms.

Science 22: 360.

OUDEMANSs, A.C. 1903. Notes on Acari xt. Tijdschr. Ent.

46: 93-134.

OUDEMANs, A.C. 1904. Acarologische Aanteekeningen

xt. Ent. Ber. Nederl. Ent. Ver. 1(18): 160-163.

OuUDEMans, A.C. 1960a. Revision des Chélétinés. Mém.

Soc. Zool. France 19: 36-218.

OUuDEMANS, A.C. 1906b. Nieuwe classificatie der Acart.

Ent. Ber. 2(27): 43-46.

OUDEMANS, A.C. 1910. Glyeyphagus tpubodas nov. sp. Ento-

mol. Ber. 3: 74.

OUDEMANS, A.C. 1914. Glycyphagus tpubodas Oudemans.

Entomol. Ber. 4: 102-103.

OuDbEmMans, A.C. 1924a. Acarologische Aanteekeningen

LXXIV, LXXV, LXXV1I, LXXVI1. Ent. Ber. Amst. 6: 249-

260, 265-274, 300-310 y 317-336.

OUDEMANS, A.C. 1924b. Nieuwste onderzockingen in de

groep der Tyroglyphidae, vulgo kaas-mijten.

Tijdschr. Ent. 67: 23-28.

OUDEMANS, A.C, 1928. Blomia nov. gen. Entomol. Ber. 7:

348.

Oubemans, A.C. 1929. Acarologische Aanteekeningen

xcIx. Ent. Ber. 8(169): 11-20.

OUDEMAns, A.C. 1937. Kritisch historisch overzicht der

Acarologie. Derde Gedeelte, Band C: 799-1348. Lei-

den: E.S. Brill.

OUDEMANS, A.C. 1938. Notes on Acari. Tijdschr. Ent. 81:

Versl. 1Xxv.

PAckarD, A.S. 1878. A guide to the study of Insects. New

York. Henry Holt and Co. 715 pp.

RobríGuEz, J.G. and D.F. BLake. 1979. Culturing Derma-

tophagoides farmae in a meridic diet. Recent Advances

in Acarology 1: 211-216.

ROHDENDORF, B.B. 1940. Mites of the families Cheyleti-

dae and Pediculoididae. Moscow Univ. Uchenye Za-

piski, Wissensch. Ber. 42: 69-98.

Sáncnez-MeDINa, M., L.D. CHarLET y M.S. MULLa. 1979.

Cambios estacionales en la población y peculiaridades

de los ácaros Pyroglyphidae en Bogotá, Colombia.

Alergia 26(3): 101-114.

Sasa, M. 1947. New information concerning mite parasi-

uc illness in the human body. Jap. New Med. 34:

167-170.

Sasa, M. 1950. Mites of the genus Dermatophagordes Bog-

danov 1864, found from human acartasis. Jap. J. Exp.

Med. 20: 519-525.

Sasa, M. and J. Ostima. 1967. On the identity of Tyropha-

gus putrescentiae (Schrank) and 7. demádiatus (Hermann)

(Acarina, Acaridae) in Japan. J. Sanit. Zool. 18(4):

216-217.

Sasakt, C. 1927. Tyroglyphus muscae, a mite infestng Stur-

mia sericariae, a fly noxious to the silkworm. J. Coll.

Agric., Tokyo 9: 151-158, figs. 8-11.

SCHRANK, F.P. 1781. Enumeratio insectorum Áustriae im-

digenorum. Aug. Vindel, pp. 507-524.

SCHWEIZER, J. 1949. Die Landmilben des Schweizerischen

National parkes. 1. Parasiuformes. Res. Rech. Sci. Parc

Nation. Suisse 2: 1-99.

tarp, J. and E. HaraMOTO, 1970. Dermatophagordes ptero-

nyssmus (Trouessart) and otuer acarina in house dust

in Hawaii. Proc. Hawaiian Entomol. Soc. 20(3): 583-

589.

Shaw, G. 1794. Vivarium Naturae. The Naturalists Mis-

cellany 6: 187.

SoLomon, M.E. 1962. Ecology of the flour mite Acarus sir0

L. (= Tyroglyphus farmae De G.). Ann. Appl. Biol. 50:

178-184.

SrieksMa, F. Th. M. 1967. The house-dust mite Dermatop-

hagoides pteronyssmus (Trouessart, 1897), producer of

the house-dust allergen (Acari: Psoroptidae). Druk:

N.V. Drukkerij v/h Battel¡ee-Terpstra Leiden, 65 pp.

Srieksma, F. Th. M. and M.LA. SpIEksMa-BOEZEMAN.

1967. The mite fauna of house dust with particular

reference to the house-dust mite Dermatophagowdes pte-

ronyssus (Trouessart, 1897) (Psoropudae: Sarcopu-

formes). Acarologia 60(1): 226-241.

Srentus, B. and A. CUNNINGTON. 1972. House dust mites

and respiratory allergy: a qualitauve survey of species

occuring in finish house dust. Scand. J. Resp. Dis. 53:

338-348.

SucimoTo, M. 1938. Studies on the Acarina, or mites, of

Formosa (2"* Rep.): The Tyroglyphid mites and their

injuries 11. J. Taihoku Soc. Agric. 42-48 p., pl. 3, figs.

1-8.

104

Summers, F.M. and D.W. PricE. 1970. Review of the mite

family Cheyletidae. University of California publi-

cations in Entomology. 61: 1-121.

TrouessarT, E. 1901. Sur deux especes, formant un gen-

re nouveau, de Sarcoptides détriticoles parasites des

fourrures. Bull. Soc. Zool. France, 26: 82-84.

Turk, F.A. 1953. A synonymic catalogue of British Acart.

Pts. 1and 11. Ann. Mag. Nat. Hist. 6(61): 1-26; 5(62):

81-99.

Turk, FA. and S.M. Turk. 1957. Systematik und Okolo-

gie der Tyroglyphiden Mitteleuropas. Beitr. Syst.

Okol. 1: 1-233.

VoLcIn, V.L 1949. Material relating to the systematics of

mites of the genus Tyrophagus Duds, 1923. C.R. Acad.

Sci. U.R.S.S. (N.S.). 65: 385-388.

VoLcin, V.L 1969. Acarina of the family Cheyletidae,

world fauna. Akad. Nauk. s.s.s.R., Zool. Inst., Opre-

del. p. Faune. s.s.s.k. 101: 1-432

VoLostscmuck, V. 1936. Mites found in stored graln in

the Crimea. Zashch. Rast. Vredit. 8: 154-156.

VoorHorst, R., M.L.A. SpreksMa-BOEZEMAN and EF. Th.

M. SpIEksMa. 1964. Is a mite (Dermatophagordes sp.) the

producer of the house-dust allergen? Allergie und

Asthma 10(6): 329-334.

VoorHorsT, R., F. Th. M. SpieksMa, H. Varekamp, Mo].

LeureN and A.W. LykLemMa. 1967. The house-dust

mite (Dermatophagordes pteronyssnus) and the allergens

itproduces. Identity with the house-dust allergen. The

Journal of allergy 39(6): 325-339.

VoorHorst, R. and F. Th. M. SrieksMa. 1969. Recent

progress in the house dust mite problem. Acta Aller-

gol. 24: 115-123.

Womerstey, H. 1941. Studies in Australian Acarina. Il.

Tyroglyphidae (s.1.). Rec. S. Aust. Mus. 6: 451-488.

ZAKHVATKIN, A.A. 1936a. A short key to the granary

mites. 2% Ed. Abstr.: Rev. Appl. Ent. A 26: 95.

ZAKHVATKIN, A.A. 1936b. Notes systématiques sur les

Acariens habitant les greniers 1-11, Résumé. Bull. Soc.

Nat. Moscou, Sect. Biol. 45(4): 268-270.

Zaxiivarkin, ALA. 1941. Faune de l, v.k.s.s. Arachnoidea

vi N% ]. Acariens Tyroglyphoides. Inst. Zool. Acad.

Sci. v.R.s.s. (N.S.) 28(1-13): 1-475.

INDICE DE TAXA APARECIDOS EN EL TEXTO

ACARIDAE, 10, 14

Acarus destructor Schrank, 49,

Acarus domesticus De Geer, 54

Acarus eruditus Schrank, 92

Acarus lepadopterorum Shaw, 86

Acarus putrescentiae Schrank, 23

Acarus siro Linné, 5,9, 13,14, 15,16,17, 18,20, 29,49,59,

Acarus spinipes Koch, 49

var. africana Oudemans, Aleurobws farmae, 14

Aleurobius farinae (Linné), 14

americanus Banks, Tyroglyphus, 23

Anagasta, 77

anglicus Hull, Glycyphagus, 49

31, 32,33, 34, 40, 73, 83, 98

arcuatus (Troupeau), Tyroglyphus, 29

ASCIDAE, 10, 77

ASTIGMATA, 10, 14

Attagenus piceus, 77

BDELLIDAE, 10, 83

bifurcata Atyeo, Spimbdella, 83

biselliela, Tineola, 77

Blattisocius tarsalis (Berlese), 5, 7, 9, 10, 12, 77, 78, 79

Blattisocius tinervorus (Oudemans), 77

Blomia kulagini Zakhvatkin, 5, 9, 10, 13,34, 35,36, 37, 38,

EAT,

Blomia tjibodas (Oudemans), 5, 9, 13,39, 40,41,42,43,55

bullery Volostschuck, Tyrophagus, 23

butlerr Hughes, Cheyletus, 92

butleri, Eugamasus, 80

cadaverum (Schrank), Lepidoglyphus, 49

Calla, 19

callae Oudemans, Rhazoglyphus, 5, 9, 13, 19, 20, 21, 22

cancriformis Hessling, Eutarsus, 92

castaneum, Tribolvum, 77

castellanu (Hirst), Coelognathus, 23

castellana (Hirst), Tyrophagus, 23

var. castellanu Hirst, Tyroglyphus longior, 23

var. castellana (Hirst), Tyrophagus longior, 23

Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw), 5,9, 10, 12,86,87,88,

89, 90, 91, 93

Cheletomorpha venustissima (Koch), 86

Cheletophyes knowltoni Beer y Dailey, 86

Cheletophyes tatami Hara, 86

CHEYLETIDAE, 10, 86

Cheyletus butlerr Hughes, 92

Cheyletus dodd: Baker, 92

Cheyletus eburneus Hardy, 92

Cheyletus eruditus (Schrank), 5, 9, 10, 12, 15, 24, 29, 34, 40,

49, 55, 65, 77, 80, 87, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98

Cheyletus ferox Banks, 92

Cheyletus longipes Megnin, 86

Cheyletus rabiosus Rohdendorf, 92

Cheyletus rufus Hardy, 86

Cheyletus seminivorus Packard, 86, 92

Cheyletus venustissimus Koch, 86

105

CHORTOGLYPHIDAE, 10, 29

Chortoglyphus arcuatus (Troupeau), 5, 9, 10, 13, 24, 29,

31,32, 33, 34, 40, 73, 83, 98

Chortoglyphus nudus Berlese, 29

Coelognathus castellana (Hirst), 23

Coelognathus putrescentiae (Schrank), 23

confusum, Tribolvum, 77

Ctenoglyphus palmifer (Fumouze y Robin), 5,7, 9, 10, 12,

45, 46, 47, 48

culinae De Leon, Dermatophagordes, 68

Dermatophagowdes culinae De Leon, 68

Dermatophagoides farinae Hughes, 5, 9, 12, 65, 68, 69,

AMET ZAS

Dermatophagoides pteronyssinus (Trouessart), 5, 9, 10, 12,

34, 40, 68, 73, 74, 75, 76

Dermatophagordes sartor (Sasa), 73

destructor Schrank, Acarus, 49

30,

44,

destructor (Schrank), Glycyphagus, 5, 9, 10, 13, 15, 20, 24,

29, 40, 49,50,51,52,53, 59, 65, 68, 73, 80,87, 93,

destructor (Schrank), Lepadoglyphus, 49

doddi Baker, Cheyletus, 92

domesticum (De Geer), Oudemansium, 34

domesticus De Geer, Acarus, 54

domesticus (De Geer), Glycyphagus, 5, 9, 13, 40, 44, 54, 55,

56, 57, 58, 77, 83

eburneus Hardy, Cheyletus, 92

echinopus (Fumouze y Robin), Rhazoglyphus, 19

eruditus Schrank, Acarus, 92

eruditus (Schrank), Cheyletus, 5,9, 10, 12, 15,24, 29, 34,40,

49, 55, 65, 77, 80, 87, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98

Eucheyleta hardyi Baker, 5,7, 9, 12, 98, 99, 100

Eugamasus sp., 5, 7, 9, 10, 12, 80, 81, 82

Eugamasus butleri, 80

Eutarsus cancriformas Hessling, 92

var. farmae Linné, Acarus siro Linné, 14

farinae (Linné), Aleurobius, 14

farinae Hughes, Dermatophagordes, 5, 9, 12, 65, 68, 69, 70,

AED 13,

farinae Latreille, Tyroglyphus, 14

Fermima fusca (Oudemans), 64

ferox Banks, Cheyletus, 92

Fresia, 19

fusca(Oudemans), Fermma, 64

fusca (Oudemans), Golueria, 5, 7, 9, 10, 13,64, 65, 66, 67,

fuscus Oudemans, Glycyphagus, 64

GLYCYPHAGIDAE, 10, 34

Ghoyphagus anglicus Hull, 49

Glycyphagus destructor (Schrank), 5, 9, 10, 13, 15,20, 24, 29,

40,49,50,51,52,53,59, 65, 68, 73, 80, 87, 93, 98.

Glycyphagus domesticus (De Geer), 5, 9, 13, 40, 44, 54, 55,

56, 57, 58, 77, 83

Gboyphagus fuscus Oudemans, 64

Glycyphagus ornatus Kramer, 5, 9, 10, 13, 49,59, 60, 61, 62,

Glycyphagus palmifer Fumouze y Robin, 44

Glycyphagus tjibodas Oudemans, 39

Goluería fusca (Oudemans), 5,7, 9, 10, 13,64,65,66,67, 98

hardy Baker, Eucheyletia, 5, 7, 9, 12, 98, 99, 100

knowltoni Beer y Dailey, Cheletophyes, 86

kulagini Zakhvatkin, Bloma, 5, 9, 10,13,34,35,36,37, 38,

18 10

Lasioserus similis Schweizer, 77

Lasioseius tarsalis Berlese, 77

Lepidoglyphus cadaverum (Schrank), 49

Lepidoglyphus destructor (Schrank), 49

lepidopterorum (Shaw), Cheletomorpha, 5, 9, 10, 12, 86, 87,

88, 89, 90, 91, 92

lepidopterorum Shaw, Acarus, 86

lintnerr Osborn, Tyroglyphus, 23

lmtneri (Osborn), Tyrophagus, 23

longipes Megnin, Cheyletus, 86

lucasua Hughes, Rhaoglyphus, 19

Meal pteronyssina Trouessart, 73

Meal toxoper Oudemans, 73

Melichares tarsalas (Berlese), 77

MESOSTIGMATA, 10,77

macropus, Neotoma, 98

muscae Sasaki, Dyroglyphus, 23

nadius Lombardini, Dvroglyphus, 25

Narcuus, 19

Neotoma micropus, 98

noxius ZaKhvatkim, Tyrophagus, 23

nudus Berlese, Chortoglyphus, 29

ornatus Kramer, Glycyphagus, 5, 9,10, 13,49,59,60,61,62,

Oudemansvum domesticum (De Geer), 54

palmifer (Fumouze y Robin), Ctenoglyphus, 5,7, 9, 10, 12,

44, 45, 46, 47, 48

palmafer Fumouze y Robin, Glyoyphagus, 44

Paralgoides pteronyssowdes Gaud y Mouchet, 73

PARASITIDAE, 10, 80

piceus, Altagenus, 77

Plodia, 77

PROSTIGMATA, 10, 83

pteronyssma Trouessart, Meaba, 73

pteronyssmus (Trouessart), Dermatophagodes, 5, 9, 10, 12,

34, 40, 68, 73, 74, 75, 76

pteronyssoides Gaud y Mouchet, Paralgoides, 73

putrescentiae Schrank, Acarus, 23

putrescentiae (Schrank), Coelognathus, 23

putrescentiae (Schrank), Tyrophagus, 5, 9, 10, 13, 15,23, 24,

25, 26, 27, 28, 29, 40, 44, 49, 55, 59, 80, 83, 87

PYROGLYPHIDAE, 10, 68

rabiosus Rohdendorf, Cheyletus, 92

Rhazoglyphus callae Oudemans, 5, 9, 13, 19, 20, 21, 22

Rhizoglyphus lucasa Hughes, 19

Rhizoglyphus echinopus (Fumouze y Robin), 19

rufus Hardy, Cheyletus, 86

saitoi (Sasa), Dermatophagodes, 73

saitor Sasa, Viscopteres, 73

seminivorus Packard, Cheyletus, 86, 92

similis Schweizer, Lasioserus, 77

siro Linné, Acarus,5,9,13, 14,15, 16,17, 18,20, 29,49,59,

Suotroga, 77

Spinibdella sp., 5,7, 9, 10, 12, 83, 84, 85

Spwmubdella bifurcata Atyeo, 83

spimpes Koch, Acarus, 49

var. tarwanensis Sugimoto, Tyrophagus longior, 23

tarsalis (Berlese), Blattisocius, 5, 7, 9, 10, 12,77, 78, 79

tarsalis Berlese, Lasioserus, 77

tarsals (Berlese), Melichares, 77

tatam Hara, Cheletophyes, 86

tineivorans (Oudemans), Typhlodromus, 77

tinerwvorus (Oudemans), Blattisocius, 77

timervorus Oudemans, Typhlodromus, 77

Tineola biselhiela, 77

tpibodas (Oudemans), Bloma, 5,9, 13,39,40,41,42,43,55

ipbodas Oudemans, Glyoyphagus, 39

toxoper Oudemans, Meaha, 73

Tnibolvum castaneum, 71

Tribolvum confusum, 77

Typhlodromus tinervorans (Oudemans), 77

Typhlodromus tinerwvorus Oudemans, 77

Tyroglyphus americanus Banks, 23

Tyroglyphus arcuatus Troupeau, 29

Tyroglyphus farmae Latreille, 14

Tyroglyphus Intner Osborn, 23

Tyroglyphus longior var. castellana Hirst, 23

Tyroglyphus muscae Sasak1, 23

Tyroglyphus nadinus Lombardina, 23

(Tyroglyphus) putrescentae (Schrank), Tyrophagus, 23

Tyrophagus bullery Volostschuck, 23

Tyrophagus castellana (Hairso) 1, 23

Tyrophagus lntner: (Osborn), 23

Tyrophagus longior var. castellana (Hirsy) 23

Tyrophagus longior var. tarwanensis Sugimoto, 23

Tyrophagus noxtus Zakhvatkin, 23

Tyrophagus (Tyroglyphus) putrescentiae (Schrank), 23

Tyrophagus putrescentiae (Schrank), 5, 9, 10, 13, 15,23, 24,

25, 26, 27, 28, 29, 40, 44, 49, 55, 59, 80, 83, 87

Tyrophagus vanheurm Oudemans, 23

vanheurm Oudemans, Tyrophagus, 23

venustissima (Koch), Cheletomorpha, 86

venustissimus Koch, Cheyletus, 86

Viscopteres sartor Sasa, 73

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