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UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS

Y DE RECURSOS NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

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DIRECTOR DE LA REVISTA

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Universidad Católica, Valparaiso

CUNZANIA

ZOOLOGIA VOLUMEN 55 NUMERO 1 1991

CONTENIDO / CONTENTS

LÓPEZ, H.L. Y A.M. MIQUELARENA. Peces loricáridos de la cuenca del Plata,

Argentina. Parte I. El género Cochliodon Heckel, 1854 (Pisces: Siluriformes) ....... 3

Loricarid fishes from the La Plata river basin, Argentina. Part I. The genus

Cochliodon Heckel, 1854 (Pisces: Siluriformes).

WEBER URBINA, L. Sinonimia y caracterización de Liopetrolisthes mitra (Dana,

1852), y Liopetrolisthes patagonicus (Cunningham, 1871) (Crustacea, Decapoda,

A a A it 13

Synonymy and characterization of Liopetrolisthes mitra (Dana, 1852) and

Liopetrolisthes patagonicus (Cunningham, 1871) (Crustacea, Decapoda, Anomu-

ra).

ANGULO, A.O. Y T.S. OLIVARES. £uxoamorpha septemtrionalis, nueva especie

de Euxoamorpha Franclemont (Lepidoptera: Ditrysia: Noctuidae): considera-

clonesmilogenéticas¿ApOoMmMoni IMEI caos 23

Euxoamorpha septemtrionalis, new species of Euxoamorpha Franclemont (Lepi-

doptera: Ditrysia: Noctuidae): phylogeneticals accounts. Apomorphy in extre-

mis?

JEREZ R., V. El género Dictyneis Baly, 1865 (Coleoptera: Eumolpinae). Taxono-

mía, distribución geográfica y descripción de nuevas especies c.ococccicconononoccninccnnnnss 31

The genus Dictyneis Baly, 1865 (Coleoptera: Chrysomelidae: Eumolpinae). Ta-

xonomic, Geographical distribution and description of new species.

ARTIGAS, J.N.; PAPAVERO, N. AND A.L. SERRA. The American genera of

Asilidae (Diptera): keys for identification with an atlas of female spermathecae

and other morphological details. VI. Tribe Atomosiini Hermann (Laphriinae),

with description of two new genera and three new species, and a catalogue of the

INCOONICADECE A ido ro AR ad dle leo hs, Side 53

Los géneros americanos de Asilidae (Diptera): claves para su identificación con

un atlas de las espermatecas de las hembras y otros detalles morfológicos. VI. Tri-

bu Atomosiini Hermann (Laphriinae), con descripciones de dos nuevos géneros y

tres nuevas especies y un catálogo de las especies Neotropicales.

IN QUEÍAS entiri I do 89

News

UN 150] J

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE Ñ DEC 9 6 199

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GA Y, Hist. de Chile. 1:14 (1848)

Portada:

Dictyneis campanensis nov. sp.

(ver págs. 46 y 51)

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORA ANIBAL PINTO. S.A.,

MAIPU 769. CONCEPCION-CHILE.

EN EL MES DE ABRIL DE 1991

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA PARA

EDICIONES UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Gayana Zool. 55(1): 3-11, 1991

ISSN 0016-531X

PECES LORICARIDOS DE LA CUENCA DEL PLATA, ARGENTINA.

PARTE 1

EL GENERO COCHLIODON HECKEL, 1854 (PISCES: SILURIFORMES)*

LORICARID FISHES FROM THE LA PLATA RIVER BASIN,

ARGENTINA. PART I

THE GENUS COCHLIODON HECKEL, 1854 (PISCES: SILURIFORMES)

Hugo L. López** y Amalia M. Miquelarena*

RESUMEN

Cochliodon cochliodon (Kner) es descripta por primera vez

para Argentina, incluyendo datos merísticos y morfométri-

cos. La anatomía de la dentición, cinturas y esqueleto caudal

es comparada con la de algunas especies de la subfamilia Hy-

postominae. La morfología de los odontodes es descripta en

base al MEB. Esta especie aparentemente restringida en la

cuenca del Plata a los ríos Paraguay y Paraná, no sobrepasa

junto con otras de la subfamilia los 32* S.

PALABRAS CLAVES: Loricariidae, Cochliodon, Sistemática,

anatomía, distribución, Argentina.

INTRODUCCION

El género Cochliodon Heckel. se distingue

dentro de los Hypostominae por tener un reduci-

do número de dientes en las quijadas (menos de

* Contribución N' 455 del Instituto de Limnología “Dr.

Raúl A. Ringuelet”.

** Instituto de Limnología “Dr. Raúl A. Ringuelet”,

C.C. 712, 1900 La Plata, Argentina-CIC y CONICET res-

pectivamente.

ABSTRACT

Cochliodon cochliodon (Kner) is described for the first time

for Argentina, including meristic and morphometric data.

The anatomy of teeth, girdles and caudal complex is

compared with that of other species in the subfamily

Hypostominae. Odontodes morphology is described based on

SEM. Inside the La Plata river basin, the species, as far as

known, is restricted to the Paraguay and Paraná rivers. As

other species of the subfamily, C. cochliodon do not overpass

the329S:

KEYWORDS: Loricariidae, Cochliodon, Systematic, anatomy,

distribution, Argentina.

20 en cada rama) en forma de cuchara. Sin em-

bargo el primer carácter es compartido con Hy-

postomus microstomus Weber (ver Weber,

1987). Según Isbrucker (1980) el género

Cochliodon está formado por seis especies:

Cochliodon cochliodon (Kner), C. hondae (Re-

gan), C. oculeus (Fowler), C. plecostomoides

Eigenmann, C. pospisili Schultz y C. pyrineusi A.

de Miranda Ribeiro, distribuidas en Colombia,

Venezuela, Brasil, Paraguay y Argentina. Re-

cientemente Ortega y Vari (1986) mencionan C.

cochliodon para Carachama en el Amazonas pe-

Gayana Zool. 55(1), 1991

ruano. Lyliestrom (1984) considera que C. pospi-

sili es un sinónimo de C. hondae y agrega una

nueva especie, C. taphorni Lyliestrom, para el río

Botanamo, Bolívar, Venezuela.

La primera cita para Argentina de este géne-

ro es la de Pozzi (1945) referida a C. cochliodon

del río Paraguay, sin material de referencia. La

captura de ejemplares provenientes del río Para-

ná nos permite certificar su presencia y ampliar la

escasa información existente sobre esta especie

(ver López et al., 1981, 1982, 1987 y 1989). En

este trabajo se detallan datos merísticos y morfo-

métricos de C. cochliodon, se precisa su distribu-

ción y se aportan datos morfológicos sobre denti-

ción, cinturas y complejo uroforal.

MATERIAL Y METODOS

MATERIAL EXAMINADO

Cochliodon cochliodon 2 ejs. MBR 7289 Corza-

cué, Corrientes, col. R. Taberner; 2 ejs. MLP 30-

9-86-6 riacho El Carrizal, Bella Vista, Corrientes,

col. J. Casciotta, A. Almirón y L. Protogino. Hy-

postomus commersoni 2 ejs. MLP 1-10-86-8 río

Reconquista, Bs. As., col. R. Taberner; 1 ej.

MLP 1-10-86-7 Río de La Plata, col. C. Roldán.

Pterygoplichtys anisitsi 1 ej. MLP 1-2-67-4, Sal-

ta; l ej. 2-10-80-1, Bella Vista, Corrientes, col. M.

Martínez, C. Darrieu y A. Almirón. Los ejempla-

res fueron diafanizados y teñidos siguiendo los

métodos propuestos por Hollister (1934) y Din-

gerkus y Uhler (1977). Los dibujos fueron realiza-

dos utilizando una cámara clara y microscopio

estereoscópico “Wild MS”. Las medidas fueron

tomadas con un calibre de precisión 0,05 mm

“Mitutoyo” siguiendo el criterio de Boeseman

(1968) y López (1986). Las fotografías de las pla-

cas fueron realizadas con microscopio electróni-

co de barrido (MEB). Para ello se utilizó una pla-

ca correspondiente a la hilera superior, próxima

al tercer radio dorsal. Las abreviaturas de las ins-

tituciones son: Museo Argentino de Ciencias Na-

turales “Bernardino Rivadavia”, Buenos Aires

(MBR) y Museo de Ciencias Naturales de la Pla-

ta, La Plata (MLP). La clasificación seguida en

este trabajo es la propuesta por Isbrucker (1980).

RESULTADOS Y DISCUSION

a. Sistemática

Cochliodon cochliodon (Kner, 1854)

(Fig. la)

Hypostomus cochliodon Kner, 1854:265-267

(Localidad tipo: rio Cujaba, Brasil)

Cochliodon cochliodon Eigenmann y Eigen-

mann, 1889:44 (nueva combinación); Poz-

zi, 1945:275 (río Paraguay); Isbrucker,

1980:39 (referencia); López et al., 1987:35

(referencia).

N.v.: vieja (Argentina); Panaque, Coroncho (Bra-

sil, Venezuela).

Descrirción: Basada en 4 ejemplares de 94,2-269

mm (X 192,5) de L. est. y 129-348 mm(X 262,6)

de L. total.

FIG. 1 Cochliodon cochliodon, a. vista dorsal (escala = lem); b. odontodes, vista superior lateral al microscopio electrónico

de barrido (MEB) (escala = 200 um.).

El género Cochliodon en la cuenca del Plata: LÓPEZ Y MIQUELARENA,

Cabeza alta, en vista lateral triangular con el

hocico terminando en punta (Fig. 2) 3,1-4,8 (X

3,9) en L. est.; ancho 0,8-1,0 (X- 0,8) en L. cab.;

altura 1,0-1,4 (X 1,1) en L. cab.; ojo en cab.

5,0-6,4 (X 5,6); en interorbital 3,0-4,0 (X- 3,5); en

hocico 3,0-4,1 (X 3,5). Ancho interobital 1,5-1,6

esfenotico

2 supraorbital

infraorbital 2

infraorbital 1

infraorbital 3 infraorbital 6

infraorbital 5

infraorbital 4

(X- 1,5) en L. cab.; hocico 1,5-1,6 (X 1,5) en L.

cab.; Longitud premaxilar 3,3-4,6 (X_ 3,7) en inte-

rorbital. Presencia de 6 infraorbitales atravesados

por un canal sensorial, de los cuales 3 bordean la

órbita (Fig. 2). La cabeza presenta tres crestas

marcadas, una sobre el supraoccipital, las otras

complejo

pterotico-

supracleitrum

cleitrum

===

FIG. 2. Cochliodon cochliodon. Vista lateral del cráneo mostrando la serie infraorbitaria (escala = 5,0 mm.).

dos se inician a la altura de las narinas, conti-

nuando hacia la región caudal. Placa supraoccipi-

tal marginada por una sola placa, la que puede es-

tar dividida por una débil sutura. Altura pe-

dúnculo caudal 3,7-4,0 (X 3,8) en su longitud;

1,8-2,0 (X 1.9) en long. interdorsal. Espina pecto-

ral alcanza el primer tercio de las ventrales

3,0-3,5 (X- 3,2) en L. est.; espina D 2,5-3,5 (X

2,9) en L. est. Aleta dorsal reclinada no llega a la

adiposa. Escudos serie longitudinal 27-28; anal-

caudal 12-14; adiposa-caudal 4-6; dorsal-adiposa

5-7; dientes premaxilares 7-9/7-8; dientes mandi-

bulares 7-8/8-9 (Fig. 3). Radios DF7; PL6; VES;

AT4; CL-14-1. Rastrillos branquiales 32-1-41.

Los odontodes de esta especie (Fig. 1b)

tienen forma de cono que emerge bajo un ángulo

muy abierto respecto a la superficie del cuerpo y

cuya mitad apical está curvada hacia atrás. La su-

perficie dorsal de los odontodes presenta dos cres-

tas longitudinales que convergen en el ápice.

Gayana Zool. 55(1), 1991

FIG. 3. Cochliodon cochliodon. Labios y dientes premaxilares

y maxilares (escala= 0,3 cm.).

Ventralmente cada odontode presenta un aspec-

to quebrado, con un ángulo que separa la mitad

basal de la mitad apical.

Los ejemplares conservados presentan un

color de fondo pardo claro, con motas sobre la

FIG. 4. Cochliodon cochliodon. Distribución en Argentna.

cabeza y parte del cuerpo (hasta el origen de la

aleta dorsal). El resto del cuerpo alternando con

tonos pardos claros y obscuros (en un ejemplar

de 311 mm de L. total) y de un tono oliváceo uni-

forme (en un ejemplar de 348 mm de L. total). El

ejemplar más pequeño ventralmente moteado y

el de mayor tamaño sin manchas. Aletas pares e

impares (excepto la caudal) con bandas transver-

sales. Se han observado doce (12) de estas bandas

en la dorsal, nueve (9) en las pectorales, ocho (8)

en las ventrales y cuatro (4) en la anal.

b. Anatomía

Howes (1983) describe la presencia de un canal o

túnel pterigoideo en C. cochliodon, carácter com-

partido con otros Hypostominae (e.g. Hyposto-

muscommersoni Valenciennes y Ptervgoplichthys

anisitsi Eigenmann y Kennedy). Schaefer (1987)

compara el opérculo de C. cochliodon con Pec-

FIG. 5. Cochliodon cochliodon. a. Premaxilar derecho e 1z-

quierdo. vista ventral: b. Premaxilar derecho e izquierdo. vis

ta dorsal (escala = 2.0 mm.)

El género Cochliodon en la cuenca del Plata: LÓPEZ Y MIQUELARENA

koltia niveata (La Monte) y Ancistrus cirrhosus

(Valenciennes). Este autor considera que la for-

ma y posición del opérculo varía ampliamente

entre los loricáridos.

En base a los pocos ejemplares disponibles,

hemos considerado conveniente dar a conocer la

mayor cantidad de información osteológica po-

sible, más aún teniendo en cuenta lo importante

que ésta resulta como base de estudios taxonómi-

cos y filogenéticos.

APARATO DENTARIO Y DENTICIÓN

Premaxilares (Fig. 5 a y b) muy móviles. Su for-

ma recuerda a la de H. commersoni que es básica-

mente triangular (ver López, 1986), pero en C.

cochliodon tiende a ser más redondeada. En total

hay 8 Ó 9 dientes en cada premaxilar dispuestos

en una serie regular. Cada uno de ellos (Fig. 6) la-

teralmente comprimido, puede compararse a una

S, con una cúspide en forma de cuchara en-

sanchada. Este último carácter no es compartido

con el resto de las especies de la subfamilia, en los

cuales la cúspide suele ser espatulada y bífida.

FIG. 6. Cochliodon cochliodon. Detalle de un diente premaxi-

lar (escala= 0,5 mm.).

maxilar

palatino

FIG. 7. Cochliodon cochliodon. Relación entre maxilar y pa-

latino (vista ventral izquierda) (escala= 2,0 mm.).

Los dientes en C. cochliodon están firmemente

implantados en el margen anterior óseo de la cu-

beta y no se desprenden con facilidad, siendo su

número constante. En cambio en la mayoría de

las especies de la familia se rompen y desprenden

con facilidad, lo que se traduce en que su núme-

ro, en algunas, sea difícil de obtener. H. commer-

soni presenta un incremento en el número de

dientes premaxilares en relación al tamaño de los

ejemplares. Así, en especimenes de 71 a 205 mm

de L. total varía entre 15 y 27, mientras que en

los de 249 a 496 mm de L. total, el número va de

27 a 42.C. cochliodon posee 5 a 7 hileras de dien-

tes de reemplazo en cada premaxilar. El maxilar

(Fig. 7) es relativamente ancho y macizo, con un

par de cóndilos que articulan con el cartílago pa-

latino.

La quijada inferior está formada por el den-

tario y el hueso ángulo-articular. El dentario

tiene la faz superior bien desarrollada y ornamen-

Gayana Zool. 5511), 1991

complejo dentario

ángulo.articular

FIG. 8. Cochliodon cochliodon. Dentario derecho, vista ante-

rior (puede observarse cómo un diente de substitución está

próximo a reemplazar al octavo roto) tescala = 2,0 mm.)

tada. La faz anterior (Fig. 8) lleva los dientes dis-

puestos en una hilera regular. Estos son semejan-

tes a los del premaxilar en cuanto a su estructura,

forma y número. Posteroventralmente el denta-

rio posee una proyección alargada que se rela-

ciona con una profunda cavidad del hueso

ángulo-articular. En H. commersoni y P. anisitsi

tal estructura es de forma roma (ver López,

1986), en cambio en C. cochliodon finaliza bifur-

cada.

CINTURA PECTORAL

En C. cochliodon cada hemicintura (Fig. 9a) con-

siste en un cleitrum, coracoides y mesocoracoides

a fosa abductora

cleitrum A A

radiales de la aleta pectoral

FiG. 9. Cochliodon cochliodon, a. Cintura pectoral (vista

ventral); b. Detalle de los radiales (escala = 2,0 mm.)

(escápula-coracoides de Lundberg, 1970) íntima-

mente relacionado al cleitrum. Este forma la par-

te anterior de la cintura y el coracoides la poste-

rior. Medioventralmente cada hemicintura se

une a la del otro lado por medio de cartílago for-

mando la sínfisis pectoral. En la porción anterior

de la sínfisis, cada cleitrum está unido al del otro

lado por finas suturas. En cambio en la porción

posterior de la sínfisis, el coracoides se une al del

otro lado por grandes suturas. La unión sutural

de estos huesos está fortalecida por fuertes liga-

mentos. El ángulo posteroinferior del cleitrum

forma, junto con el mesocoracoides, un recep-

táculo donde se acomoda la cabeza de la espina

pectoral. El proceso dorsal es una prolongación

hacia arriba de la porción lateral del cleitrum que

penetra en un surco o muesca de la cara inferior

del “complejo” pterótico-supracleitrum, realizán-

dose así la unión entre cintura y cráneo. Este pro-

ceso en C. cochliodon como en H. commersoni y

P. anisitsi está desarrollado en forma punzante

(ver López. 1986). Posteriormente el coracoides

posee un proceso llamado mesocoracoides. Este

deja un gran foramen para el pasaje de músculos

que están ligados a la cabeza de la espina pecto-

ral. La fosa abductora es amplia y está expuesta

ventralmente.

Los radiales de la aleta pectoral (Fig. 9b) son

tres; el primero es ensanchado y se relaciona con

la espina pectoral y con el primer radio; el segun-

do, alargado y algo expandido en su base, sos-

tiene al segundo radio y el tercero más delgado,

sostiene a los demás (3%, 4%, 5% y 6%). La espina

defensiva muy osificada tiene un fuerte mecanis-

mo de articulación. Todos los demás radios en

número de 6 son ramificados y con finas denticu-

laciones. Como en otros loricáridos el postempo-

ral está ausente (Lundberg, 1975), o fusionado

con el pterótico-supracleitrum (Fink $ Fink,

1981). Atendiendo a los caracteres descriptos no

existen diferencias significativas entre la cintura

pectoral de C. cochliodon y las de H. commerso-

ni y P. anisitsi.

CINTURA PÉLVICA

En la cintura pélvica (Fig. 10) de C. cochliodon

como en otros loricáridos, la placa basal o basip-

terygia está fuertemente osificada y las dos mita-

des están unidas por una sutura aserrada en la lí-

El género Cochliodon en la cuenca del Plata: LÓPEZ Y MIQUELARENA

proceso anterior

proceso anterior extemo

borde del y

proceso

"217

interno

A W

borde del —= INE SA ¡ Ñ

xo externo

y k )

Y N foramen

S medio

> Sy) EJ sutura

PE. =

E media

> lateropterygium

proceso anterior |

Interno Y Se

(E)

cabeza del E

primer radio Ñ

e ¡eS

¡===>

proceso posterior

FIG. 10. Cochliodon cochliodon. Cintura pélvica (vista dor-

sal) (escala= 5,0 mm.).

nea media. Esta sutura está interrumpida aproxi-

madamente en la mitad del extremo anterior de

la placa por un foramen medio (Shelden, 1937) y

luego en la parte media de la misma, por un fora-

men rectangular posterior. Hemos podido obser-

var que la forma del foramen medio varía en al-

gunas de las especies de Hypostominae; es en for-

ma de lágrima en C. cochliodon; está totalmente

redondeado en HA. commersoni y H. plecostomus

(Linné) (ver López, 1986 y Schaefer, 1987 respec-

tivamente) y es ovalado en P. anisitsi (ver López,

1986).

El hueso pélvico posee un par de procesos

anteriores. El primero se une internamente en la

línea media con el del otro lado en forma in-

completa, proyectándose hacia adelante, termi-

nando suavemente dilatado. El segundo es un

gran proceso lateral externo, que si bien se ex-

tiende hacia la línea media, no llega a unirse a

ella. Tanto los procesos internos como los exter-

nos tienen bordes que se extienden sobre la su-

perficie de la placa (anterior interno y anterior ex-

terno). En la base del proceso anterior externo

cerca del borde lateral de la placa hay dos estruc-

turas de tipo condilar. El primero sirve para la ar-

ticulación de la espina y el segundo para la articu-

lación de los radios restantes de la aleta. También

en la base de dicho proceso y por encima del pri:

mer cóndilo, existe una larga varilla ósea, llama-

da lateropterigium (Shelden, 1937), que se articu-

la al basipterigium correspondiente. El proceso

posterior consiste en dos placas delgadas, anchas,

chatas y fuertemente osificadas. Sobre la superfi-

cie ventral de dichas placas está la fosa muscula-

ris donde se une parte del abductor profundus

(Shelden, 1937).

La aleta pélvica posee en total seis (6) radios.

El primero es grueso, indiviso, sin ramificaciones

y endurecido para formar una fuerte espina cur-

va bien osificada, de ápice punzante y cubierta

por odontodes conspicuos. Los radios restantes

están ramificados y llevan muchos odontodes pe-

queños a lo largo de los bordes dorsal y ventral.

No hay radiales pélvicos en Siluroideos (Lund-

berg, 1970).

ESQUELETO CAUDAL

El esqueleto caudal de C. cochliodon (Fig. 11) es

compacto y fuerte con espinas neurales y hema-

les sumamente expandidas. Como en otros loricá-

ridos, existe una tendencia a la reducción del nú-

mero de elementos hipurales. Si tenemos en

cuenta que la condición primitiva de los Silurifor-

mes es la de poseer (6) hipurales separados y

parhipural separado (Lundberg y Baskin, 1969),

podríamos suponer que, en cuanto a este carác-

ter, los Loricariidae serían formas avanzadas que

responden a un patrón de completa fusión, en

donde además de la fusión entre hipurales 1-2 y

parhipural, el uroneural y frecuentemente el epu-

ral están fusionados con los hipurales 3+4+5,

epural

espina neural

ES hipurales 3-5

uroneural

parhipural

hipurales 1-2

hipurapófisis

hiporapófisis secundaria

FIG. 11. Cochliodon cochliodon. Esqueleto caudal, vista late-

ral izquierda (escala= 5,0 mm.).

espina hemal

Gayana Zool. 55(1), 1991

constituyendo una pieza compacta. Los hipurales

2 y 3 están firmemente unidos, salvo distalmente

donde se mantienen separados por un pequeño

diastema.

En los loricáridos existen hipurapófisis “tipo

C” (Lundberg y Baskin, 1969). Estas estructuras

permiten una mayor o menor superficie de inser-

ción de los músculos hipocordal longitudinalis y

flexor ventralis (Nursall, 1963 a y b). C.

cochliodon posee una hipurapófisis algo aguzada

y una hipurapófisis secundaria que se continúa

en forma de cresta por casi toda la superficie del

hipural 2. Existe reducción en el número de los

radios caudales principales (8/8), los que están se-

parados en dorsales y ventrales por el diastema

hipural. Los radios caudales procurrentes infe-

riores y superiores (3-5/3-5) son ensanchados y es-

tán sostenidos por los bordes ventrales de los

neuracantos y hemacantos de los últimos

centros.

CONCLUSIONES

Entre las especies de Hypostominae de Argenti-

na, €. cochliodon puede considerarse poco abun-

dante, en la cuenca del Plata está restringida a los

ríos Paraguay y Paraná. Según López y Miquela-

rena (1988) no sobrepasa, junto con otras espe-

cies de la familia, los 32% S. Como ya fue comen-

tado, a juzgar por los datos publicados (López et

al., 1981, 1982, 1987 y 1989) no es muy común

en territorio argentino. Sin embargo considera-

mos que una de las causas de la escasez de refe-

rencias se debe posiblemente a determinaciones

erróneas, ya que su aspecto general coincide con

el de las especies de Hypostomus.

Básicamente la osteología de C. cochliodon

responde a un patrón anatómico semejante a la

de otras especies de la subfamilia como H. com-

mersoni y P. anisitsi (ver López, 1986). Las dife-

rencias más notables que hemos encontrado

entre €. cochliodon y estas dos últimas especies

son las siguientes:

l.- En C. cochliodon los dientes premaxilares y

dentarios tienen forma de cuchara ensancha-

da y su número es reducido y constante. En

P. anisitsi y H. commersoni son espatulados,

bífidos y su número es variable.

En H. commersoni y P. anisitsi la porción

postero-ventral del dentario es de forma ro-

155)

ma, mientras en C. cochliodon termina bifur-

cada.

3. En C. cochliodon y H. commersoni el proce-

so anterior de la cintura pélvica es más largo

y angosto que en P. anisitsi (ver López, 1986

Figs. 81, 82 y 83), pero en C. cochliodon pre-

senta además una dilatación en el extremo

anterior. El foramen medio es totalmente re-

dondeado en A. commersoni, ovalado en P.

anisitsi, en forma de gota o lágrima en C.

cochliodon.

4.- En C. cochliodon las placas posteriores al

supraoccipital están separadas por una débil

sutura (carácter que comparte con P.

anisitsi). En H. commersoni estas placas es-

tán perfectamente separadas entre sí.

AGRADECIMIENTOS

A Roberto C. Menni por la lectura crítica del ma-

nuscrito; a Andrés Boltovskoy por las sugeren-

cias recibidas en la descripción de los odontodes y

a Rafael Urrejola por las fotografías del MEB.

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Manuscrito aceptado en octubre de 1990

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Gayana Zool. 55(1): 13-22, 1991

ISSN 0016-531X

SINONIMIA Y CARACTERIZACION DE L/OPETROLISTHES MITRA

(DANA, 1852) Y LIOPETROLISTHES PATAGONICUS (CUNNINGHAM,

1871) N. COMB.

SYNONYMY AND CHARACTERIZATION OF LIOPETROLISTHES

MITRA (DANA, 1852) AND LIOPETROLISTHES PATAGONICUS

(CUNNINGHAM, 1871) N. COMB.

Laura Weber Urbina*

RESUMEN

El género Liopetrolisthes fue descrito por Haig, J. (1960) co-

mo un género monoespecífico, citando como única especie a

L. mitra (Dana, 1852). Este se caracteriza por mostrar dife-

rentes patrones de color, cada uno de los cuales le permite ca-

muflarse perfectamente sobre un determinado hospedador.

Estos hospedadores son principalmente los erizos Tetrapygus

niger (Molina), Loxechinus albus (Molina) y la estrella

Stichaster striatus Muller y Troschel. Un reciente estudio

morfométrico y genético-bioquímico de estos morfos de color

(Weber, L. y R. Galleguillos in litteris) demostró que este gé-

nero está compuesto por dos válidas especies.

Este trabajo tuvo por objetivo determinar el nombre es-

pecífico correcto de cada una de las especies, para lo cual se

hizo una revisión de las diagnosis de los sinónimos de £.

mitra; y se estudió el único material tipo encontrado, los sinti-

pos de Porcellana patagonica, solicitados al British Museum

de Londres. Con esta información se pudo verificar que la es-

pecie L. mitra corresponde a aquel grupo de individuos que

habitan sobre 7. niger y $. striatus. La segunda especie del gé-

nero corresponde a los individuos habitantes de £. albus. Se

revalida para ésta la especie descrita por Cunningham, R.O.

(1871), estableciendo la nueva combinación Liopetrolisthes

patagonicus.

Para ambas especies se entregan los sinónimos correctos,

las características diagnósticas, la distribución basada en re-

gistros puntuales verificados, patrones de color y otros aspec-

tos biológicos.

* Depto. de Zoología, U. de Concepción, Casilla 2407-

10, Concepción, Chile.

PALABRAS CLAVES: Chile, Decapoda, Anomura, Sistemática,

Distribución, Patrones de color, Color críptico, Comensales.

ABSTRACT

Liopetrolisthes was described as a monospecific genus by

Haig, J. (1960), with the single species L. mitra (Dana, 1852).

This genus show different characteristic colour patterns,

each of them is a cryptic colouration over a specific host.

These hosts are mainly the sea-urchins Tetrapygus

niger (Molina), Loxechinus albus (Molina and the sea star

Stichaster striatus Muller and Troschel. A recent

morphometric and electrophoretic study showed that

Liopetrolisthes is composed by two valid species (Weber, L.

and R. Galleguillos, in litteris). The objective of the present

work is to determine the correct specific mame for each

species. It was done a revision of the synonymies diagnosis of

L. mitra and it was studied the unique types material found,

the syntypes of Porcellana patagonica which were applied to

the British Museum (Natural History) of London. This

information verified that L. mitra correspond to that

individuals living over 7. niger and $. striatus. The second

species of the genus correspond to the individuals living over

L. albus. lt was revalidated the species described by

Cunningham, R.O. (1871), establishing the new combination

Liopetrolisthes patagonicus.

Synonymies, diagnostic characters, distributions based

on verified point. record. colour patterns and other biological

aspects are given for each species.

KEYWORDS: Chile, Decapoda, Anomura, Systematics,

Distribution, Colour patterns, Cryptic coloration,

Commensals.

Gayana Zool. 55(1), 1991

INTRODUCCION

La familia Porcellanidae está representada en

Chile por 16 especies distribuidas en cinco géne-

ros, entre los cuales se destaca en este trabajo a

Liopetrolisthes. Hasta hace poco tiempo, de estas

16 especies sólo quince habían sido reconocidas.

El género Liopetrolisthes fue descrito por Halg,

J. (1960) como un género monoespecífico, men-

cionando como única especie a L. mitra (Dana,

1852).

El género Liopetrolisthes fue caracterizado

principalmente por un telson formado por cinco

placas; la presencia de espinas en el carpo de los

quelípodos; rostro tridentado; y segmento basal

de la anténula lateralmente expandido, con dos

lóbulos largos y estrechos en el lado interno de la

cara anterior.

En la literatura los representantes del género

han sido mencionados como epibiontes de

equinodermos (Bouvier, E.L., 1906; Porter, C.E.,

1926; Meredith, D., 1939; Haig, J., 1955, 1960;

Antezana, T., E. Fagetti y M.T. López, 1965; Vi-

viani, C.A., 1965). Werding, B. (1983) ha consi-

derado como comensalismo a la relación existen-

te entre porcelánidos y equinodermos. Sus prin-

cipales hospedadores son el erizo negro Tetrapy-

gus niger (Molina), el erizo comestible Loxechi-

nus albus (Molina), la estrella Srichaster striatus

Muller y Troschel y con menor frecuencia es po-

sible encontrarlo sobre el erizo café Arbacia spa-

tuligera (Valenciennes).

Los individuos de este género muestran

patrones característicos de color, los que les pro-

porcionan un excelente efecto de camuflaje sobre

un determinado hospedador.

Un reciente estudio morfométrico y electro-

forético realizado sobre los morfos de color de

Liopetrolisthes demostró que este género no es

monoespecífico, sino que está constituido por dos

especies (Weber, L. y R. Galleguillos in litteris).

Los individuos de ambas especies habían st-

do considerados como L£. mitra, atribuyéndosele

una distribución que se extiende desde Ancón

(Perú) hasta el Estrecho de Magallanes, Chile

(Haig. J.. 1960; Retamal, M., 1981).

MATERIALES Y METODOS

En primer lugar se verificó la presencia de las ca-

racterísticas del género en ambas especies. Luego

se determinaron las características diagnósticas

de cada una de ellas. Con esta información se re-

visó la sinonimia de £. mitra con el fin de deter-

minar cuál es la denominación específica correcta

para cada una de ellas. Para esto se revisaron las

diagnosis dadas por cada uno de los autores de

los diferentes sinónimos de L. mitra, y para el ca-

so especifico de Porcellana patagonica Cun-

ningham, 1871, se solicitó los sintipos existentes

en el British Museum de Londres.

Una vez determinadas las denominaciones

correctas de las especies, se revisó el material

existente en la sala de Sistemática de la Pontificia

Universidad Católica de Chile de Santiago

(SSUC), del Museo Zoológico de la Universidad

de Concepción (MZUC) y del Museo Nacional

de Historia Natural (MNHN). Se verificó a qué

especie correspondía cada ejemplar y el lugar de

procedencia. Esta información permitió determl-

nar los registros reales de cada una de las espe-

cies.

También se entrega información sobre la va-

riación cromática intraespecífica, obtenida a par-

tir de observaciones en terreno y de experiencias

en acuario de cambios de hospedador y color del

sustrato, realizadas en la Estación Costera de In-

vestigaciones Marinas de la Pontificia Universi-

dad Católica de Chile.

RESULTADOS

Ambos grupos especificos son consistentes con la

descripción del género Liopetrolisthes.

La revisión de la sinonimia demostró que la

otra especie del género corresponde a aquélla

descrita por Cunningham, R.O. (1871), ya que

los sintipos de Porcellana patagonica muestran

los caracteres diagnósticos de esta especie. Consi-

derando que esta especie presenta las caracteristi-

cas descritas por Haig, J. (1960) para el género

Liopetrolisthes, se cambia de género a la especie

de Cunningham, R.O. op cit, y se establece la

nueva combinación específica Liopetrolisthes pa-

tagonicus. Entre los sintipos de Porcellana pata-

gonica se elige un lectotipo, el cual quedará depo-

sitado en el British Museum de Londres.

A continuación se entregan las sinonimias

de cada una de las especies, su localidad tipo, pro-

cedencia del material examinado, registros pun-

Liopetrolisthes spp.: WEBER, L.

tuales verificados, rango de distribución, caracte-

rísticas diagnósticas, medidas extremas registra-

das, períodos de hembras ovígeras, hábitat y

patrones de color. En este último punto se hace

referencia a las observaciones en terreno y a los

experimentos en acuario mencionados con ante-

rioridad en materiales y métodos.

Liopetrolisthes mitra (Dana, 1852)

Porcellana mitra, Dana, 1852: 419

P(orcellana) mitra?, Stimpson, 1858: 229

Porcellana spinosa, Philippi, 1860: 169

Petrolisthes mitra, Haig, 1955: 43, 52

Liopetrolisthes mitra, Haig, 1960: 17-21

LOCALIDAD TIPO: San Lorenzo, Perú (Dana, 1852).

MATERIAL EXAMINADO

Arica: col. SSUC, 1965: 2 machos (SSUC-Dc.0234), 1 macho

(SSUC-Dc.0235); La Portada, Antofagasta: col. SSUC, 1965:

1 macho y 1 hembra ovigera (SSUC-Dc.0229); La Rinconada,

Antofagasta: col. SSUC, 1965: 1 hembra ovígera, | macho

(SSUC-Dc.0231); Bahía de Mejillones: col. SSUC, 1965: 1

hembra (SSUC-Dc.0233); Coliumo: col. SSUC, 1964: 1

hembra ovigera (SSUC-Dc.0678); Coloso, Antofagasta: col.

SSUC, 1965: 1 hembra (SSUC-Dc.0227); Cartagena, San An-

tonio: col. J.C. Castilla, 1965: 1 hembra (SSUC-Dc.0427); El

Tabo: col. P. Ojeda, 1977: 4 machos, 5 hembras ovigeras

(MNHN-D-10818); Taltal: col. I. Kong, 1975: 45 hembras, 43

hembras ovigeras, 72 machos (MNHN-D-10781); Bahía de

Concepción: col. M. Retamal, 1973: 1 hembra ovígera

(MZUC); Dichato: col L. Weber, 1989: 1 hembra ovigera

(MZUC); Dichato: col. L. Weber, 1988: 8 hembras, 3

hembras ovígeras, 12 machos; Lirquén: col. L. Weber, 1988:

6 hembras, 10 hembras ovígeras, 11 machos; Ramuntcho:

col. L. Weber, 1988: 7 hembras, 10 hembras ovígeras, 11

machos; Las Cruces: col. L. Weber, 1988: 15 hembras, 15

machos.

REGISTROS PUNTUALES VERIFICADOS (Fig. 1):

PERU, Sn. Lorenzo (Dana, J.D., 1852), Bahía de Indepen-

dencia (Meredith, D., 1939; Haig, J., 1955);

CHILE, Arica (SSUC-Dc.0234, Dc.0234); Bahía de Mejillo-

nes (SSUC-Dc.0233); La Portada, Antofagasta

(SSUC-Dc.0229); La Rinconada, Antofagasta

(SSUC-Dc.0231); Coloso, Antofagasta (SSUC-Dc.0227); Tal-

tal (MNHN-D-10781); Isla Blanca, Taltal (Philippi. 1860);

Montemar (Haig, 1955; Antezana er al., 1965); Quintay, Las

Cruces (col. L. Weber); EL Tabo (MNHN-D-10818); Carta-

BOLIVIA

¡o)

«XA

OCEANO

FIGURA 1: Registros puntuales de Liopetrolisthes mitra.

gena (SSUC-Dc.0427): Bahia de Concepción: Dichato (col.

L. Weber); Coliumo (SSUC-Dc.0678); Tomé, Lirquén (col. L.

Weber); Bahía de San Vicente (col. L. Weber).

RANGO DE DISTRIBUCIÓN

Desde Ancón, Perú, hasta Ramuntcho, Bahía

San Vicente, Chile.

CARACTERISTICAS DIAGNÓSTICAS

Rostro triangular con pequeños lóbulos laterales

Gayana Zool. 5511), 1991

FIGURA 2: Rostro del cefalotórax. a) L. patagonicus; b) L.

mitra.

0.5cm

FIGURA 3: Quelipodos. a) L. patagonicus; b) L. mitra.

no proyectados (Fig.2b). Carpo de los quelípodos

con dos espinas agudas bien desarrolladas siendo

la proximal más ancha (Fig.3b). En ocasiones es-

ta espina puede estar bifurcada como se observa

en la Fig.7. Superficie de los quelípodos finamen-

te granulosa (Fig.3b). Dáctilo y propodito de los

quelípodos pequeños y angostos (Weber, L. y R.

Galleguillos in litteris) (Fig.3b). Propodito por lo

general no más ancho que el máximo ancho del

carpo de los quelipodos (Fig.4), a diferencia de lo

observado en la otra especie, en donde el propo-

dito es siempre más ancho que el carpo. Estas di-

ferencias son significativas a una P<= 0.05 de

acuerdo a la prueba no paramétrica del paralelis-

mo de dos regresiones lineales (Hollander, M. y

W. Douglas, 1973).

L patagonicus

Y=1.0614X + 0.0178

1. 0.998

del Quelipodo

Lomitra

09 Y=0.7835X- 0.1288

10.996

0.7 N-80

Log Ancho del Propodo

06 1.4

0.8

Log

1.0 12 16

Ancho del Carpo del Quelipooo

FIGURA 4: Lipetrolisthes spp. Relación ancho del propodito

y ancho del carpo de los quelípodos.

MEDIDAS

HemBRAS: 1.89x1.56 mm (Lirquén) a 7.90x8.20

mm (Dichato);

Machos: 2.60x2.30 mm (Dichato) a 9.00x8.77 mm

(El Tabo, MNHN-D-10818).

La hembra ovígera de menor tamaño es de

4.74x4.55 mm de Lirquén.

HABITAT

Sus principales hospedadores son la estrella

Stichaster striatus y el erizo negro Tetrapygus ni-

ger. Con menor frecuencia es posible encontrarlo

habitando sobre Arbacia spatuligera. Bouvier,

E.L. (1906) reporta a la especie sobre Heliaster

helianthus. Estos registros poco frecuentes son

explicados por Viviani, C.A. (1969) como ca-

suales y debido a la predación de este equinoder-

mo sobre los hospedadores de Liopetrolisthes.

Es posible encontrar a estos individuos

sobre su hospedador desde el estado de megalopa.

Cuando sobrepasan cierto tamaño y ya no

pueden mantenerse viviendo entre las espinas y

pies ambulacrales, se establecen bajo el erizo, ba-

jo sus espinas. Si se les quita el hospedador, rápi-

Liopetrolisthes spp.: WEBER, L.

damente se dirigen hacia el otro hospedador más

cercano. Se les ha señalado en algunos casos ha-

bitando bajo piedras, sin embargo, esto no sería

habitual y sólo sería la consecuencia de una re-

ciente fuga desde un hospedador que haya sido

predado o extraído.

Se ha podido observar que los tamaños má-

ximos alcanzados ocurren sobre 7. niger y no

sobre Stichaster striatus. Esto probablemente se

debe a una sobrevivencia diferencial de los tama-

ños mayores sobre sus distintos hospedadores. Se

ha observado en terreno y también en acuario

una predación por parte de la estrella hacia los ta-

maños mayores de L. mitra.

Batimétricamente se le puede encontrar des-

de el intermareal hasta por lo menos los 18 m de

profundidad.

PATRONES DE COLOR

Esta especie presenta dos patrones característicos

de color, dependiendo del hospedador sobre el

cual se encuentre, y en los individuos de mayor

tamaño también tiene cierta influencia el color

del sustrato.

Sobre los erizos Tetrapygus niger y Arbacia

spatuligera esta especie presenta un patrón de co-

lor negro o café oscuro, respectivamente, que

abarca todo el caparazón. A lo largo del cepha-

lothorax presenta una banda central blanca que

se extiende desde el rostro hasta la parte posterior

del cephalothorax, pudiendo alcanzar los dos pri-

meros segmentos del abdomen (Fig.6).

El segundo patrón de color se registra en

aquellos individuos que se encuentran habitando

sobre la estrella Stichaster striatus, y se caracterl-

za por presentar un diseño jaspeado con pigmen-

tos azules y anaranjados en todo el caparazón

(Fig.7).

También es posible encontrar patrones de

color intermedio entre ambos morfos de color

(Fig.8). Experiencias en acuarios de cambios de

hospedador demostraron que los individuos al ser

mantenidos sobre el hospedador que no les pro-

porciona camuflaje, inician su cambio de un

patrón de color al otro, manifestándose exclusi-

vamente a través de mudas sucesivas. En una pri-

mera ecdysis sólo alcanzan el patrón intermedio

mencionado con anterioridad y sólo a partir de la

segunda logran alcanzar el color críptico.

En terreno se ha observado en sustratos de

color rosado producto de algas calcáreas, que

aquellos individuos que por su tamaño no

pueden mantenerse sobre el erizo negro 7. niger

y por lo tanto se mantienen viviendo sobre el

sustrato pero siempre bajo sus espinas, muestran

un patrón de color intermedio.

Los decápodos obtienen sus pigmentos ca-

rotenoídeos de su alimentación particularmente

de astaxantinas a partir de B-carotenos y sus derl-

vados provenientes del plancton y detritus mari-

nos (Goodwin, T.W., 1960). Los pigmentos que

principalmente contribuyen al color del cefalotó-

rax en decápodos anomuros son complejos de

proteínas-astaxantinas y “ommochromes” en sus

dos estados, oxidados y reducidos (Goodwin,

T.W., 1971). Estos individuos no obtienen sus

pigmentos directamente de su hospedador o

sustrato como ha sido observado en otras espe-

cies, como por ejemplo en Acanthonyx petiveri

(Wilson, R., 1987) que obtiene sus pigmentos di-

rectamente del alga sobre la cual vive. Esto se pu-

do comprobar con experiencias en acuarios, con-

sistentes en observaciones de cambios en los

patrones de color en ausencia del hospedador.

Los individuos no precisan del hospedador para

lograr el cambio de un patrón al otro, sólo basta

con mantenerlos sobre un sustrato del mismo co-

lor.

ALIMENTACIÓN

Los porcellánidos son principalmente filtradores,

habiendo alcanzado algunos en forma secundaria

otros métodos de obtención de alimento (Kropp,

R.K., 1981). En acuario se ha observado la ten-

dencia de estos individuos a ingerir sedimento.

Posiblemente esto constituya una forma secun-

daria de alimentación. Esto nos sugiere que los

individuos también pudieran estar alimentándose

de descamados epidérmicos y exudados corpora-

les del hospedador, como ya ha sido registrado

para otros porcellánidos comensales (Kropp,

R.K., 1981; Werding, B., 1983).

Liopetrolisthes patagonicus

(Cunningham, 1871) n. comb.

Porcellana patagonica Cunningham, 1871:

495

Gayana Zool. 551), 1991

Porcellana pulchellula Cano, 1889: 260

Petrolisthes patagonicus Lenz, 1902: 748

Lecroryrus: Macho, Port Otway (Pto. Barroso),

Chile.

Depositado en el British Museum (Natural His-

tory), Londres.

LocaLipab Tipo: Port Otway (Pto. Barroso), Chile.

MATERIAL EXAMINADO:

Estrecho de Magallanes y Port Otway (Pto. Barroso), Chile: 2

sintipos de Porcellana patagonica Cunningham, 1871 (British

Museum (Natural History), Londres); Pta. Blanca, Tocopilla:

col. SSUC, 1965: 2 machos (SSUC-Dc.0232); Islote Patch

(Bahía Anna Pink): ejemplares de la Expedición Chonos

CISFUNDA, 1979; Arica: col. SSUC, 1965: 2 hembras oví-

geras y 1 macho (SSUC-Dc.0234), 1 macho y 1 hembra

(SSUC-Dc.0235); Peninsula de Mejillones, Antofagasta: col.

SSUC, 1965: 1 hembra y 1 macho (SSUC-Dc.0237); Caleta

Benavente, Tumbes: col. SSUC, 1964: 1 macho

(SSUC-Dc.0239); Roquerío Duao: col. SSUC, 1963: 1 macho

(SSUC-Dc.0238); La Portada, Antofagasta: col. SSUC, 1965:

l hembra ovígera y 1 macho (SSUC-Dc.0229); Las Cruces:

col. Yáñez y Carvacho, 1966: 1] hembra ovigera

(SSUC-Dc.0586); La Rinconada, Antofagasta: col. SSUC,

1965: 8 hembras, 5 machos y 1 hembra ovigera

(SSUC-Dc.0231); Mehuin: col. Viviani, 1963: 1 macho

(SSUC-Dc.0225); Iquique: col. SSUC, 1965: 3 hembras ovíge-

ras y 5 machos (SSUC-Dc.0236); Antofagasta: col. SSUC,

1965: 2 hembras ovígeras y 2 machos (SSUC-Dc.0228), 2

machos (SSUC-Dc.0226);, Coloso, Antofagasta: col. SSUC,

1965: 2 machos y 10 hembras (SSUC-Dc.0227); Mehuín: col.

Viviani, 1964: 8 hembras ovígeras, 12 machos y 6 hembras

(SSUC-Dc.0224): Las Cruces: Col. L. Weber, 1989: 15

hembras y 6 machos (MZUC); Cobija: col. A. Pose, 1973: 1

macho (MNHN-D-10793), Montemar: legado por M.T. Ló-

pez, 1963: 1 hembra (MNHN-D-10251); Antofagasta: col. 1.

Vila, 1062 (MNHN-D-10158).

REGISTROS PUNTUALES VERIFICADOS (Fig. 5):

PERU, San Lorenzo (Cano. G., 1889)

CHILE, Arica (SSUC-Dc.0234; SSUC-Dc.0235). Iquique

(Lenz, H., 1902; SSUC-Dc.0236); Pta. Blanca, Tocopilla

(SSUC-Dc.0232); Cobija (MNHN-D-10793); Peninsula de

Mejillones, Antofagasta (SSUC-Dc.0237); La Portada, Anto-

fagasta (SSUC-Dc.0229). La Rinconada. Antofagasta

(SSUC-Dc.0231); Antofagasta (SSUC-Dc.0228; Dc.0226;

MNHN-D-10158); Coloso, Antofagasta (SSUC-Dc.0227);

Montemar (MNHN-D-10251); Valparaiso (Porter, C.E.,

1926), Quintay (Weber); Las Cruces (SSUC-Dc.0586); Ro-

querío Duao (SSUC-Dc.0238); Lirquén, Bahía de Concepción

OCEANO

Figura 5: Registros puntuales de Liopetrolisthes patagonicus.

(Weber); Caleta Benavente, Península de Tumbes

(SSUC-Dc.0239); Ramuntcho, Pta. Hualpén (Weber); Lota,

Golfo de Arauco (Weber): Mehuin (SSUC-Dc.0225:

Dc.0230; Dc.0224; Vivani, C.A., 1969); Ahuenco, Chiloé

(Weber); Islote Patch, Bahía Anna Pink (Expedición Chonos-

CIS FUNDA, 1979, SSUC); Port Otway (Pto. Barroso) y

estrecho de Magallanes (British Museum (Natural History)

Londres).

RANGO DE DISTRIBUCIÓN

San Lorenzo, Perú, al Estrecho de Magallanes,

Chile.

Liopetrolisthes spp.: WEBER, L.

CARACTERÍSTICAS DIAGNÓSTICAS

Rostro tridentado (Fig.2a). Carpo del quelípodo

con tres espinas igualmente desarrolladas en los

individuos adultos (Figs.3a y 9). En los indivi-

duos de menor tamaño la espina proximal es muy

pequeña e incluso en los primeros cangrejos

puede no ser evidente (Fig.10).

Propodito y dáctilo de los quelipodos son

grandes y anchos (Fig. 3a) en relación a los de L.

mitra. El propodito es en general más ancho que

el ancho máximo del carpo del quelípodo (Fig.4).

Superficie de los quelípodos con granulaciones

gruesas (Fig.3a).

MEDIDAS

Hembras: 2.55X2.05 mm (Lirquén) a 13.08x14.16

mm (Las Cruces);

Machos: 2.52x2.00 mm (Lirquén) a 13.32x13.08

mm (Las Cruces);

Hembra ovígera más pequeña: 4.32x3.80

mm (Lirquén).

() indica lugar de procedencia.

HABITAT

Su principal hospedador es el erizo comestible

Loxechinus albus. Estos, al igual que los indivi-

duos de £. mitra, viven entre las espinas y pies

ambulacrales mientras el tamaño se los permita.

Cuando han alcanzado tamaños superiores viven

sobre el sustrato pero siempre bajo sus espinas.

En estos últimos años se les ha empezado a en-

contrar sobre los hospedadores de L. mitra, pero

en muy baja frecuencia. Esto probablemente se

deba a una colonización de éstos sobre nuevos

hospedadores en consecuencia a la ausencia de su

hospedador habitual producto de su sobreexplo-

tación. Sin embargo, su patrón de color no le con-

fiere un efecto de camuflaje sobre estos nuevos

hospedadores ($. striatus, T. niger y A. spatulige-

ra). Hasta el momento no se han registrado adul-

tos ni hembras con huevos sobre los nuevos hos-

pedadores.

Batimétricamente, esta especie se distribuye

desde el intermareal hasta los 15 m de profundi-

dad (Viviani, C.A., 1969).

PATRONES DE COLOR

La observación de una gran cantidad de indivi-

duos en la reserva de Las Cruces de la Pont.

Univ. Católica de Chile permitió verificar la exis-

tencia de una variación cromática ocurrida du-

rante el crecimiento de los individuos. Estos indi-

viduos van pigmentándose gradualmente sobre el

cefalotórax, principalmente por un pigmento ver-

de, a medida que ellos van creciendo. Esta va des-

de los individuos más pequeños con una casi

completa ausencia de pigmentos sobre el cefalo-

tórax (Fig.10) hasta los individuos de mayor ta-

maño completamente pigmentados, excepto por

una banda central blanca semejante a la observa-

da en £. mitra (Fig.9). Es probable que esta espe-

cie sí obtenga sus pigmentos directamente de su

hospedador L. albus, ya que sólo a medida que

van creciendo van adquiriendo a través de mudas

sucesivas esta pigmentación. Esto puede obser-

varse con mayor claridad al ver los estados inter-

medios de pigmentación (Fig.11).

ALIMENTACIÓN

Al igual que para L. mitra, esta especie también

mostró una tendencia a alimentarse de sedimento

al mantenerlos en acuario. De acuerdo a Viviani,

C.A. (1969), esta especie ha sido observada ali:-

mentándose de los excrementos de su hospeda-

dor £. albus. Sin embargo, esto no fue observado

en las experiencias realizadas en la Estación Cos-

tera de Las Cruces. Este autor también menciona

haber observado a estos individuos haciendo

estragos en los lugares de postura de Conchole-

pas concholepas, devorando sus huevos y cápsu-

las que los contienen; y que se alimentaría de in-

dividuos jóvenes del tunicado Pyura chilensis.

Sin embargo, esto tampoco ha sido observado en

la localidad de Las Cruces.

PERIODO DE HEMBRAS OVÍGERAS

En esta especie también se han encontrado

hembras ovígeras durante todos los meses del

año en la localidad de Las Cruces.

Gayana Zool (1), 199]

FIGURAS 6-11: Fig.6: L. mitra. Patrón de color característico observado sobre el erizo 7. niger; Fig.7: L. mitra. Patrón de

color característico observado sobre la estrella S. striatus; Fig.8: L. mitra. Patrón de color intermedio entre los dos morfos

conocidos; Fig.9: L. patagonicus. Patrón de color característico de individuos adultos; Fig.10: L. Patagonicus. Patrón de

color característico de individuos juveniles; Fig.11: L. patagonicus. Patrones de color de individuos de tamaño intermedio

Liopetrolisthes spp.: WEBER, L.

DISCUSION

Dana, J.D. (1852) caracteriza a su especie por un

rostro triangular, manos angostas y por dos dien-

tes en el carpo de los quelípodos. Esta correspon-

de a una correcta diagnosis para L. mitra, la pri-

mera especie del género, que se caracteriza por te-

ner como hospedadores a 7. niger, S. striatus y a

A. spatuligera.

La especie de Stimpson, W. (1858), sin lugar

a duda está referida a la especie de Dana, J.D.

(1852).

Philippi, R.A. (1860) describe a Porcellana

spinosa con una diagnosis sumamente ambigua,

ya que describe caracteres de ambas especies. Por

ejemplo, menciona un rostro tridentado que es

más evidente en la segunda especie del género.

Sin embargo, menciona manos de los quelípodos

delgados y angostos que son característicos de L.

mitra. Menciona, además, a un patrón de color

“moreno de canela” con una banda central blan-

ca que alcanza la mitad del cefalotórax, con patas

anuladas y manos casi bermejas (rojas). El patrón

moreno de canela es característico de L. mitra

cuando está sobre Arbacia spatuligera, y en loca-

lidades en presencia de muchas algas café como

en Dichato (Octava Región) es posible ver una

banda central blanca que sólo alcanza hasta la

mitad del cefalotórax o que incluso puede estar

ausente. El carácter de patas anuladas y manos

casi bermejas es frecuente en individuos de tama-

ños intermedios de la segunda especie. Sin embar-

go, en patrones de color intermedios de £. mitra,

observados en individuos que han cambiado re-

cientemente de hospedador, también es posible

encontrar este patrón.

La ambigúedad de la diagnosis de Philippi

también fue reconocida por Haig, J. (1960) y por

otros autores anteriores, siendo por esta razón no

tomada en cuenta por tales autores (Haig, J.

1960). Todo el material de Philippi se perdió

(Haig, J., comn. pers., 1985), por lo que no es po-

sible corroborar exactamente a qué especie está

referida. Sin embargo, yo he considerado a Por-

cellana spinosa como sinónimo de L. mitra por

las características diagnósticas que me parecen

más relevantes: manos de los quelípodos delgadas

y estrechas; patrón de color moreno de canela.

Los sintipos de Porcellana patagonica Cun-

ningham (1871) muestran claramente todas las

características diagnósticas de la segunda especie

del género, características también señaladas pa-

ra Porcellana pulchellula de Cano, G. (1889).

La especie de Lenz, H. (1902) también está

referida a la especie de Cunningham, R.O.

(1871).

Haig, J. (1960) consideró que el número de

espinas en el carpo y la forma del rostro eran ca-

racteres que variaban con el crecimiento del indi-

viduo. Este error se justifica por el hecho que L£.

patagonicus, que tiene tres espinas en el carpo, y

un rostro claramente tridentado, alcanza tama-

ños significativamente mayores que L. mitra. Por

lo tanto, previo al estudio morfométrico y

electroforético realizado sobre los individuos de

este género (Weber, L. y R. Galleguillos in litte-

ris) se podía suponer que estos individuos fueran

las tallas mayores de L. mitra, dado el gran pare-

cido en el diseño cromático entre las dos especies.

Además, como lo indica el trabajo anteriormente

mencionado, las diferencias morfológicas entre

ambas, L. mitra y L. patagonicus, se van acen-

tuando a medida que los individuos van aumen-

tando de tamaño.

La confusión de ambas especies bajo el

nombre de £L. mitra determinó que se sobredi-

mensionara la distribución geográfica de ella, ya

que muchos de los registros del extremo sur de

Chile en realidad corresponden a £. patagonicus.

Por lo tanto, mientras L. patagonicus se extiende

hasta el Estrecho de Magallanes (54% 00” S, 712

00” W) (Cunningham, R.O., 1871), para la otra

especie sólo se tiene registros hasta Ramuntcho,

Bahía de San Vicente (36 44” S, 73% 08” W). Sin

embargo, se podría esperar que al menos se ex-

tienda hasta el norte de la isla de Chiloé, locali-

dad hasta la cual es posible encontrar todavía

cantidades considerables de su hospedador prin-

cipal T. niger. Pero no podemos asegurar esto

mientras no existan registros de ello.

AGRADECIMIENTOS

En primer lugar deseo agradecer al Dr. Paul

Clark, de la Sección de Crustáceos del British

Museum (Natural History) de Londres, por la fa-

cilitación del material tipo de Porcellana patago-

nica (Cunningham).

También deseo agradecer al Dr. Juan Carlos

Castilla, de la Pontificia Universidad Católica de

Chile, por la posibilidad otorgada de realizar ob-

Gayana Zool. 55(1), 1991

servaciones y experiencias en acuario en la Esta-

ción Costera de Investigaciones Marinas en Las

Cruces (Chile Central), perteneciente a la misma

institución.

Y por último agradezco sinceramente a los

Srs. Patricio Zavala y Elvira Solar por la posibili-

dad otorgada de revisar todo el material rela-

cionado existente en la Sala de Sistemática de la

Pontificia Universidad Católica de Chile, en el

Museo Nacional de Historia Natural de Santiago

y en el Museo Zoológico de la Universidad de

Concepción, respectivamente.

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KroPP,

Manuscrito aceptado en noviembre de 1990

159)

Gayana Zool. 55(1): 23-30, 1991

ISSN 0016-531X

EUXOAMORPHA SEPTEMTRIONALIS, NUEVA ESPECIE DE

EUXOAMORPHA FRANCLEMONT (LEPIDOPTERA: DITRYSIA:

NOCTUIDAE): CONSIDERACIONES FILOGENETICAS. ¿APOMORFIA

IN EXTREMIS ?

EUXOAMORPHA SEPTEMTRIONALIS, NEW SPECIES OF

EUXOAMORPHA FRANCLEMONT (LEPIDOPTERA: DITR Y SIA:

NOCTUIDAE) PHYLOGENETICALS ACCOUNTS. APOMORPH Y IN

EXTREMIS?

Andrés O. Angulo* y Tania S. Olivares*

RESUMEN

Se describe una nueva especie del género Euxoamorpha

Franclemont, 1950: E. septemtrionalis n. sp. del Ecuador (Le-

pidoptera: Noctuidae). Se hacen algunas consideraciones filo-

genéticas usando el método manual de Hennig y los progra-

mas PAUP (versión 3.0) y MacClade (versión 2.1).

PALABRAS CLAVES: Lepidoptera. Noctuidae. Euxoamorpha

Franclemont. Sistemática filogenética. Subregión andinopa-

tagónica.

INTRODUCCION

En una reciente revisión del género Euxoa-

morpha Franclemont, Angulo et al. (1987) le

asignan 4 especies; estos taxa se encuentran

distribuidos en la subregión Andino-patagónica,

siendo E. mendosica Hampson, el que se en-

*Departamento de Zoologia, Universidad de Concep-

ción, Casilla 2407, Apartado 10, Concepción, Chile, S.A.

ABSTRACT

A new species of the genus Euxoamorpha Franclemont,

1950: E. septemtrionalis n.sp. from Ecuador (Lepidoptera:

Noctuidae) is desribed. Some phylogeneticals accounts are

made using the manual method of Henning and the

programs PAUP (version 3.0) and MacClade (version 2.1).

KEYWORDS: Lepidoptera. Noctuidae. Euxoamorpha Francle-

mont. Phylogenetic systematics. Andino-patagonian subre-

gion.

cuentra más al norte, especificamente en Mendo-

za (Argentina).

Este género tiene una característica que lo

hace singular entre los géneros de Noctuinae, la

cual es el uncus bifido, condición totalmente

nueva entre los géneros neotropicales conocidos;

es así que a mayor división del uncus mayor es la

condición derivada.

Revisando lepidópteros ecuatorianos, que

actualmente estamos estudiando, se encontró

ejemplares que pertenecen al género Euxo-

amorpha Franclemont, pero con algunas caracte-

rísticas que merecen ser analizadas.

Gayana Zool. 55(1). 1991]

MATERIALES Y METODOS

Se utilizaron ejemplares provenientes del Museo

Ecuatoriano de Ciencias Naturales (MECN).

Se examinaron los ejemplares bajo lupa este-

reoscópica Carl Zeiss IVb, con cámara clara de

Abbé, incluida en el estativo. Para el examen de

la genitalia se utilizó el método corriente de

extracción (Angulo y Weigert, 1977). La medida

incluida en cada figura corresponde a 1 mm.

Para el análisis filogenético se utilizó los es-

tados apomórficos de los 24 caracteres usados en

Angulo, et al. (1987) correspondientemente pola-

rizados por el método del grupo externo, para lo

cual se usaron los géneros Peridroma Huebner y

Copitarsia Hampson. Además, se agregó un

nuevo carácter, el N* 25 (alas posteriores no

hialinas <0> y alas posteriores hialinas <l>); por

otra parte el carácter 1 fue realmente redefinido

en sus estados: bífido medial <0> y bífido total

<1>. Estos estados de caracteres fueron tabulados

junto con los ya obtenidos de las demás cuatro

especies conocidas (Tabla I).

En la construcción del árbol filogenético se

utilizó el método manual de Hennig, con los ca-

racteres apomórficos correspondientes. Además

se utilizó el paquete de programas PAUP (Phylo-

genetics Analysis Using Parsimonia) en su ver-

sión 3.0 y el programa MacClade (en su versión

2.1), para confirmar o reafirmar los resultados

antes obtenidos.

ABREVIATURAS USADAS

apófisis anteriores.

aed aedeagus.

amp ampulla.

ap apófisis posteriores.

dus ductus seminalis.

esbag espina del cornuti sin la base ancha y globosa.

cl : Clasper.

cebu cervix bursae.

cobu corpus bursae.

cor cornutl.

cu cucullus.

MECN Museo Ecuatoriano de Ciencias Naturales.

Ecuador.

MZUC Museo de Zoología de la Universidad de Con-

cepción. Chile.

sac saccus.

sacl sacculus.

un uncus.

val valva.

ves vVesica.

yxt yuxta.

RESULTADOS

Euxoamorpha septemtrionalis n. sp.

Tipos. 1 macho (Holotipo), Ecuador, Imbabura.

3-4-88, Ruales coll.; depositado en el Mu-

seo de Zoología de la Universidad de Con-

cepción, Concepción, Chile.

l hembra (Alotipo), Ecuador, Imbabura,

3-4-88, Ruales coll.; depositado en el Mu-

seo Ecuatoriano de Ciencias Naturales,

Quito, Ecuador.

Macho (Fig.1): Cabeza con escamas castaño-claras

con la región apical castaño-oscuro terminando

con blanco albísimo; palpos con escamas castaño-

claras y oscuras entremezcladas, el tercer seg-

mento del palpo con escamas claras; antenas con

cilias en la cara ventral de los segmentos, las

cuales son en largo —a lo menos— subiguales al

ancho del segmento. Tórax: patagia con escamas

castañas con la región apical castaño-oscuro ter-

minando con blanco albísimo, lo que forma una

banda castaño-oscura en frente del tórax; tegula

con escamas castañas de ápice blanquizco; tibias

con espinas castaño-rojizas, cubiertas con esca-

mas castaño-claras y algunas oscuras hacia el ápi-

ce; alas anteriores con escamas castaño-claras de

color de fondo, salpicadas con algunas escasas es-

camas oscuras; bandas poco notables a excepción

del borde costal; mancha orbicular suboval alar-

gada; mancha reniforme castaño-oscura hacia su

sector central, ambas manchas están relaciona-

das por escamas castaño-oscuras que las bordean

continuándose entre ellas; mancha claviforme es-

casamente visible, algo reducida; mancha apical

con escamas blanquizcas; banda subterminal

representada por una línea suavemente ondulada

de escamas castaño-oscuras; ala posterior con es-

camas blanquizcas hialinas. Abdomen con esca-

mas castaño-claras y algunas oscuras entre-

mezcladas. Genitalia (Fig.7): ampulla incurvada

ventralmente y sobresaliendo fuera de la valva;

valva con corona en su tercio distal; yuxta

subtriangular con una espina gruesa incurvada

posteriormente en el centro de ella; aedeagus

subgloboso (Figs. 8 y 10), con 3 a 4 espinas delga-

das y 1 más corta y ancha de punta subaguda.

E. septemtrionalis n. sp.: ANGULO, A.O. Y T.S. OLIVARES

FIG. 1. Adulto macho y FIG. 2. Adulto hembra de E. sepremtrionalis n. sp FIG. 3. Adulto macho de £. eschata Francle

mont. FIG. 4. Adulto macho de E. ingoufii (Mabille). FIG. 5. Adulto macho de £. mendosica Hampson FG. 6. Adulto

macho de E. molibdoida (Staudinger)

Gayana Zool. 55(1), 1991

Hembra (Fig.2): similar al macho; antenas ciliadas,

el largo de las cilias es subigual a la mitad del

ancho del segmento correspondiente. Genitalia

(Fig.9) Corpus bursae globoso, sin signum; cervix

bursae largo y delgado terminando en el ductus

seminalis.

EXPANSIÓN ALAR: 17.00 mm.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Cañar, Imbabura (Ecua-

dor).

FecHa De vueLo: Abril y mayo.

MATERIAL EXAMINADO:

8 ejemplares (3 machos y 5 hembras). 1 macho (Holotipo) y 1

hembra Ecuador, Imbabura, 3-4-88, Ruales coll. <MZUC>, 1

hembra (Alotipo) Ecuador, Imbabura, 3-4-88, Ruales coll.

<MECN>; 2 hembras (1 gen. prep.) Ecuador, Imbabura,

5-1V-88, Trampas coll. ¿MZUC>; 1 hembra Ecuador, Imba-

bura, 3-1V-88, Trampas coll. <MECN>; 1 macho, Ecuador,

Imbabura, 5-1V-88, Trampas coll. <MECN>: 1 hembra

(gen.prep.), Ecuador, Cañar, 1-5-1986, Bastidas coll.

<MZUC>.

El nombre específico está expresando el lugar de

la distribución en relación con la mayor parte de

las especies hasta ahora conocidas, las cuales son

notoriamente meridionales.

UBICACIÓN DE LA ESPECIE EN LA CLAVE DE ANGULO ET AL. (1987).

En la clave de Angulo et al (1987, p. 76) —según la maculación alar y espinas— esta especie llega

al 2 del cual se separa de la siguiente manera:

2 Alas anteriores con la mancha claviforme poco notable ..............o.ooo.oo.oo... 4

4(2) ¿Alas posteriores CastalldSio. ces oe E. ingoufii (Mabille)

4. Alasiposteriores blanco: malas a o ale Galicia E. septemtrionalis n.sp.

En la clave (op. cit.) —basada en la genitalia del macho— la nueva especie llega al 2 del cual conti-

núa de la siguiente manera:

Zo: ¿Ampulla sobrepasa ventralmente la valvas 4

ANS CO MUS EPM A OE do E. mendosica (Hampson)

4. Comutid eS ELA E. septemtrionalis n.sp.

En la clave (op.cit.) —basada en la genitalia de la hembra— la nueva especie llega hasta el 3(1”) del

cual sigue de la siguiente manera:

1 Cervocbursae entorma de (CO subIECO e a N 4

4(3). Cernviibursa ccoo OR E. molibdoida (Staudinger)

4. Cervix DursaeSODTE cio o a a E E. septemtrionalis n.sp.

E. septemtrionalis n. Sp.: ÁNGULO, A.O. Y T.S. OLIVARES

1mm

===]

1mm

FIG.7. Genitalia del macho y FIGS.8 y 10. Vesica insuflada del macho de E. septemtrionalis n.sp. FIG 9. Genitalia de la

hembra de E. septemtrionalis n.sp.

Gayana Zool. 55(1), 1991

SISTEMÁTICA FILOGENÉTICA

Para el método manual de Hennig y los progra-

mas de computación no se consideraron los ca-

racteres 2, 5 y 6, los cuales eran simplesiomorfías

del género, además no se consideró los caracteres

13, 14 y 18, por ser autapomorfías del género y

que sólo corroboran la holofilia (sensu Ashlock,

1971) del género de tal manera que la matriz de

datos quedó estructurada de la siguiente forma:

TABLA 1

Node DB TIBOO DI SOLAS

eschata OA IOMA AO 11 O

molibdoi IO CON A OO UN AO AO

mendosic OO A OO 10,0 "1::010:50

ingoufi LIO AA AO 100-0701 100110

septem DOLO 000 1 A O OA

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Hasta la publicación del presente trabajo, nos ha-

bían quedado dos impresiones: primero, que las

especies del género Euxoamorpha Franclemont,

eran sólo cuatro (Angulo et als. 1987) y segundo,

de que este género era un invasor sureño que se

había desplazado hacia el norte, durante mucho

tiempo, en su historia evolutiva dando la impre-

sión de tener más bien una explicación dispersa-

lista.

eschatl molibd ingou/ mendos septem

13.14.18

FIG. 11. Cladograma obtenido por el método manual de Hen-

nig.

La primera de nuestas impresiones —evi-

dentemente— ha cambiado con este presente

hallazgo; la cobertura de distribución que las es-

pecies alcanzaban —hasta ahora— por el norte

hasta Mendoza precordillerano, ahora se ha ex-

19, 23.2

tendido hasta Ecuador. Si hubiera existido otra

especie de este género más al norte de dicha

distribución, debía ser necesariamente más apo-

mórfica en sus caracteres: alas posteriores más

blanquizcas, alas anteriores castaño-claras, uncus

bífido totalmente, espinas del cucullus presente,

ápice de la ampulla sobrepasando largamente el

borde costal ventral de la valva, etc., éstos se han

cumplido con el hallazgo de la presente especie.

Sin embargo existen uno de estos caracteres:

la espina del cornuti de “base ancha y globosa”

(similar a una “aceitera”), se encuentra sin la base

“ancha y globosa” (Fig.8), sin embargo, debemos

establecer —hipotéticamente— que existe una

aparente “reversión” del estado del carácter, la

cual pierde el carácter de reversión si la analiza-

mos de la siguiente forma:

Espina normal de-——>Espina grande de ——>Espina grande de

base normal base ancha y globosa base ancha

(a) (a') (a”)

Esta secuencia de caracteres es muy impor-

tante, ya que se ha postulado, anteriormente, que

la situación a' es la apomorfía que sustenta toda

una tribu denominada Austrandesiini Angulo y

Olivares, 1990. Se estima que este estado de la es-

pina gruesa del cornuti (a”) no es comparable a la

espina común y corriente en un estado ple-

siomórfico (a), por lo cual parece una “reversión”

como antes se indicó; sin embargo nos inclinamos

a pensar de que se trata de una neoformación, en

el sentido de la transformación de estados de ca-

racteres.

eschat molibd septem mendos ingouf

FIG 12. Cladograma obtenido por el PAUP.

E. septemtrionalis n. sp.: ÁNGULO, A.O, Y T.S. OLIVARES

El cladograma del PAUP (Fig.12) nos pare-

ce aceptable, en términos generales. Sin embargo

deberíamos aceptar que el grupo hermano

mendosica-ingoufi, se separó por un evento vica-

riante posterior al que produjo la separación de

septemtrionalis, como esta última posee más ca-

racterísticas en estado apomórfico que el grupo

hermano ya indicado, este cladograma nos pare-

ce poco aceptable, a pesar de que su C.I. (índice

de consistencia) es de 0.846 y la longitud del ár-

bol de 20.

El cladograma que nos entrega el MacClade

(Fig.13) nos parece más apropiado que el ante-

rior, su C.I. es de 0.75 y su longitud del árbol es

de 24; además se asemeja más al cladograma ob-

tenido por el método manual de Hennig (Fig. 11).

molibd eschat ingouf mendos septem

1d F

FIG.13. Cladograma obtenido por el MacClade, en el cual,

además se indican los eventos vicariantes que produjeron las

distintas especies, a partir de una especie ancestral A del Cre-

tácico inferior: 1] =Cretácico medio. 2=Cretácico superior.

3 =Mioceno. 4=Plioceno. 5= Pleistoceno.

Según el cladograma obtenido, nuestra in-

terpretación debe ser netamente vicariante; de es-

ta forma e hipotéticamente los eventos vicarian-

tes sucedieron de la siguiente forma (Fig. 13):

Durante el Cretácico inferior (ca. de 70

millones de años <m.a.>) existió una especie an-

cestral A que se distribuyó por toda la Antártica

y la subregión Andino-patagónica (Fig.14), en

ambientes prácticamente temperado-cálidos y

uniformes. Tras un primer evento vicariante,

ocurrido probablemente en el Cretácico medio se

separaron dos especies: B y C; la especie C se ex-

tinguió en el continente Antártico posteriormen-

te; en cambio la especie B ocupaba toda la subre-

gión andino-patagónica.

¡E =

FIG.14. Probable distribución de los continentes durante el

Cretácico superior, en el cual se destaca nítidamente la subre-

gión andino-patagónica (modificada de Barron, 1987).

Durante el Cretácico superior (ca. de 65

m.a.), un segundo evento vicariante separa el

stock andino-patagónico en dos conjuntos especí-

ficos: molibdoida y la especie D; un tercer evento

vicariante durante el Mioceno (ca. 26 m.a.):

cuando comenzó a levantarse la Cordillera de los

Andes (la que produjo condiciones iniciales de

desuniformidad de ambientes), vicarió a partir del

conjunto B en 2 especies: eschata y E (Fig.14); un

cuarto evento vicariante tiene lugar durante el

Plioceno (ca. de 6 m.a.) produciendo —a partir de

la especie E— dos entidades específicas: ingoufl y

F, finalmente un quinto y último evento vica-

riante, en el Pleistoceno (ca. de 2.5 m.a.), dio ori-

gen a dos especies —a partir de la especie F—:

mendosica y septemtrionalis.

Debemos considerar, finalmente, que existe

un gran conjunto de géneros que conforman la

tribu Austrandesiini y que — muy probablemen-

te— han seguido toda esta cadena de eventos vi-

cariantes, más arriba mencionados, además de

otros no mencionados, para representar esta tri-

bu de exclusiva distribución andino-patagónica.

AGRADECIMIENTOS

Deseamos expresar nuestros agradecimientos a la

Dirección de Investigación de la Universidad de

Gayana Zool. 55(1), 1991

Concepción (Proyecto D.I. 20.38.11), por la ayu-

da prestada en el desarrollo del presente trabajo.

Agradecemos igualmente al Sr. Diego Bastidas

del MECN y al Sr. Carlos Ruales de la Funda-

ción “Simón Bolívar” de Quito (Ecuador) por el

préstamo del material biológico y la ayuda

incluida en ella; también damos las gracias a

nuestros colegas Dr. María E. Casanueva y el

Prof. Luis E. Parra, del Departamento de Zoolo-

gía de la Universidad de Concepción, por la ayu-

da prestada en el manejo del programa PAUP

(versión 3.0) y del MacClade (versión 2.1).

Por último, es de nuestro interés destacar las

acertadas sugerencias de nuestros colegas: Dr.

Haroldo Toro, Prof. de la Universidad Católica

de Valparaíso, y Prof. Jaime Solervicens, de la

Universidad Metropolitana de Ciencias de la

Educación, en lo que dice relación con las apre-

ciaciones cladísticas y sus perspectivas.

BIBLIOGRAFIA

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amorpha Franclemont, 1950. Género monotípico de

mariposas nocturnas: ¿mito oO realidad? Gayana

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lata (Blanchard) y Pseudaletia impuncta (Gueneé): nóc-

tuidos hadéninos similares en Chile (Lepidoptera: Noc-

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tribu de Noctuinae. Rev. Peruana Entomol. 32:84-86.

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tion or contact? Syst. Zool. 385(4):322-332,

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WiLEY. E.O. 1981. Phylogenetics: the theory and practice of

phylogenetics systematics. John Wiley «€ Sons.N.Y.

439 pp.

Manuscrito aceptado en diciembre de 1990.

Gayana Zool. 55(1): 31-52, 1991

ISSN 0016-531X

EL GENERO DICTYNEIS BALY, 1865 (COLEOPTERA:

CHRYSOMELIDAE: EUMOLPINAE). TAXONOMIA, DISTRIBUCION

GEOGRAFICA Y DESCRIPCION DE NUEVAS ESPECIES*

THE GENUS DICTYNEIS BALY, 1865 (COLEOPTERA:

CHR YSOMELIDAE: EUMOLPINAE). TAXONOMIC, GEOGRAPHIC

DISTRIBUTION AND DESCRIPTION OF NEW SPECIES

D.0 kx

Viviane Jerez R.

RESUMEN

Se entrega una visión actualizada del género Dictyneis Baly,

1865 y de todas las especies adscritas a él: D. asperatus

(Blanchard, 1851), D. conspurcatus (Blanchard, 1851), D. hu-

milis (Blanchard, 1851), D. quadridentatus (Philippi y Philip"

pi, 1864), D. terrosus (Philippi y Philippi, 1864) y D. canalicu-

lata Jacoby, 1900, en base a caracteres morfológicos externos

y genitalia masculina y femenina.

Se describen tres nuevos taxa: D. campanensis, D. par-

vus y D. brevispinus y se entrega una clave para la identifica-

ción de las especies. Se incluyen además, ilustraciones del

complejo espermoteca, basadas en observaciones a microsco-

pía óptica y electrónica, edeago y otros detalles morfológicos.

Además se dan a conocer preferencias vegetacionales, rangos

distribucionales y altitudinales de la mayor parte de las espe-

cies.

Se designa a Myochrous asperatus como especie tipo del

género y se entregan algunos comentarios sobre la validez no-

menclatural del género Dictyneis y su carácter de endémico

para Chile.

*Trabajo financiado parcialmente por la Dirección de

Investigación de la Universidad de Concepción. Proyecto

20.38.12.

**Departamento de Zoologia. Casilla 2407. Facultad de

Ciencias Biológicas y Recursos Naturales. Universidad de

Concepción. Chile.

PALABRAS CLAVES: Chrysomelidae. Eumolpinae. Dictyneis.

Especie Tipo. Nueva especie. Taxonomía. Chile.

ABSTRACT

An actualized view of genus Dictyneis Baly, 1865 and all its

species is made: D. asperatus (Blanchard, 1851), D.

conspurcatus (Blanchard, 1851), D. humilis (Blanchard,

1851), D. quadridentatus (Philipp. y Philippi, 1864), D.

terrosus (Philippi y Philippi, 1864) y D. canaliculata Jacoby,

1900.

This study is based on the external morphology and the

male and female genitalic structures. Three new taxa are

described. D. campanensis, D. parvus and D. brevispinus and

a key of all species is given.

The genitalic figures of males and females are based on

the observations on scanning electron and optical

microscopy, edeagus and other morphological details are

included.

Additionally, the vegetation associated, and

geographical, altitudinal ranges are given for each species.

Myochrous asperatus is designated type-species of genus

Dictyneis and some comments of its validity of nomenclature

and chilean character endemism is hereby informed.

KEYWORDS: Chrysomelidae. Eumolpinae. Dictyneis. Type

species. Taxonomy. Chile.

Gayana Zool. 55(1). 1991

INTRODUCCION

La tribu Myochroini, de la subfamilia Eumolpi-

nae, incluye 14 géneros de los cuales 8 son neo-

tropicales y el resto neárticos (Bechyné, 1953).

Los caracteres morfológicos esenciales de todos

ellos son: la presencia de escamas o pelos cortos

que cubren todo el cuerpo, el protórax con un

margen notorio y el proesterno lobulado bajo los

ojos (Blake, 1950).

Para Chile se ha señalado la presencia de 5

géneros: Myochrous Erichson, 1847 (1 sp), Glyp-

toscelis Le Conte, 1859 (2 sp), Jansonius Baly,

1878 (2 sp), Paraulacia Brethes, 1928 (1 sp) y

Dictyneis Baly, 1865 (6 sp).

De todos ellos, Paraulacia, Jansonius y

Dictyneis son considerados endémicos de Chile,

siendo además Dictyneis el único género áptero

de la tribu.

A excepción de los trabajos de Bechyné

(1950, 1953), Blake (1950, 1967) y Shute (1974),

no se han hecho mayores aportes al conocimien-

to sistemático de los Myochroini neotropicales.

Blake (1950) considera que los Myochrous de

Norte América están muy relacionados con los

Glyptoscelis por similitudes fenotípicas externas

y por la estructura de la genitalia masculina.

Con respecto a Dictyneis, Jerez y Berti

(1987) establecen que Dictyneis pulvinosus

(Blanchard, 1851) designada por Baly especie ti-

po del género Dictyneis, debe ubicarse dentro del

género Glyptoscelis y proponen la nueva combi-

nación Glyptoscelis pulvinosus.

Como consecuencia del trabajo señalado an-

teriormente, es preciso designar una nueva espe-

cie tipo para el género Dictyneis. En el presente

trabajo se designa a Myochrous asperatus

Blanchard, 1851, como especie tipo del género

Dictyneis Baly, 1865.

En la presente revisión, se redescriben

machos y hembras de todas las especies asignadas

al género Dictyneis y se designan lectotipos; se

describen tres nuevas especies y se dan a conocer

datos sobre las preferencias vegetacionales, distri-

bución altitudinal y geográfica de la mayor parte

de las especies.

MATERIAL Y METODO

Para esclarecer la posición y validez taxonómica

de las especies, se revisó el material tipo conserva-

do en el Museo Nacional de Historia Natural.

Santiago, Chile (M.N.H.N. Chile); Muséum Na-

tional d'Histoire Naturelle, Paris (M.N.H.N. Pa-

ris) y British Museum Natural History, London

(B.M.N.H.); además se examinó un total de 505

individuos, todos ellos de las colecciones

M.N.H.N. Santiago, Museo de Zoología Univer-

sidad de Concepción (M.Z.U.C.), colección Ma-

rio Pino y colección personal de la autora.

Para caracterizar algunos aspectos sobre la

estructura de las vías genitales ectodérmicas fe-

meninas y genitalia masculina se utilizó un

microscopio electrónico (ETEC Autoscann Ul)

del Laboratorio de Microscopía Electrónica de la

Universidad de Concepción.

RESULTADOS

Género Dictyneis

Myochrous Blanchard, 1851 (nec Erichson,

1847): 544

Dictyneis Baly, 1865:434-435; Chapuis,

1874:319; Lefevre, 1885:120; Philippi,

1887:783; Clavareau, 1914: 128; Blackwel-

der, 1946:664; Bechyné, 1950:289; Blake,

1950:4; Bechyné, 1953:250; Suzuki,

1970:229; Jerez y Berti, 1987:89.

Especie tiro. Myochrous asperatus Blanchard,

1851. Presente designación.

DESCRIPCIÓN

Tamaño variable según la especie y sexo de los

individuos. Longitud: 4.5-8 mm.

Insectos con el tegumento por lo general de

color café cobrizo, brillante, ápteros y de aspecto

giboso; cuerpo alargado y convexo, cubiertos de

abundante pilosidad amarillenta y opaca, que en

algunas especies adquiere aspecto escamoso.

CABEZA: metida en el protórax; pilosidad abundan-

te y divergente en la linea media del vértice. An-

tenas largas y filiformes; ojos emarginados. Cli-

peo con puntuación grande y esparcida a modo

de celdillas, sin pilosidad.

El género Dictyneis: JEREZ R., V.

TórAx: pronoto convexo y de forma variable, ge-

neralmente cuadrangular, subcuadrado o trape-

zoidal y con una carena que en los márgenes late-

rales puede o no proyectarse en dientes de núme-

ro, forma y tamaño variable según las especies.

Disco con puntuación profunda y densa en for-

ma de celdillas, a veces puede presentar una

impresión a cada lado. Proesterno ancho y lobu-

lado bajo los ojos. Escutelo pequeño.

ELirros ovalados y soldados en la sutura; superfi-

cie rugosa, con puntuación densa y por lo general

más profunda y separada que la del pronoto; la

mayoría de las especies presentan tubérculos que

sobresalen y que están recubiertos por mechones

de pelos hirsutos dispuestos en hileras longitudi-

nales o bien localizados en el ápice; en los machos

son menos notorios o bien están ausentes.

Alas metatorácicas ausentes.

Patas: robustas, fémures armados de un diente en

el margen interno; las patas protorácicas presen-

tan uñas apendiculadas en las hembras y bífidas

en los machos. Los machos de algunas especies

presentan en las procoxas una espina de tamaño

variable.

00X_—

FIG. 1. a) Dictyneis parvus n.sp. genitalia femenina: b: bursa copulatriz; c: conducto de la espermoteca; o: oviducto; ov: ovi-

positor; sp: cápsula de la espermoteca; re: recto; v: vagina. b) Dictyneis humilis, genitalia femenina: c: conducto de la esper-

moteca; sp: cápsula de la espermoteca; c) Dictyneis canaliculata, gl: glándula de la espermoteca; d) Dictyneis conspurcatus,

ápice del edeago.

Gayana Zool. 55(1), 1991

GENITALIA- las estructuras esclerosadas del aparato

reproductor femenino siguen el patrón básico da-

do por Kasap y Crowson (1980) para los Eumol-

pinae (Figs. la y 2c). Las hembras presentan una

bursa copulatriz bastante desarrollada (Fig. la),

la cápsula de la espermoteca tiene forma de

herradura o curvada en U y está muy esclerosada

(Fig. 1b); el ápice de la cápsula puede ser redon-

deado (Fig. 11a), aguzado (Fig. 11b) o bien puede

terminar en un filamento (Fig. 11f); el conducto

de la espermoteca o ducto capsular, en las espe-

cies puede ser relativamente corto (Fig la) o largo

y enrollado en forma circular (Fig. 1b); además se

observan dos bolsas vaginales ubicadas a ambos

lados de la vagina (Fig. 2c). La glándula de la cáp-

sula presenta innumerables canalículos de pro-

bable función secretora al interior de la glándula

(Fig. 1c). La superficie externa de la cápsula es li-

sa y no presenta poros ni canalículos glandulares.

La genitalia masculina es del tipo seudoarti-

culado (Bechyné y S. de Bechyné, 1969) con el ló-

bulo medio formado por dos zonas: una basal

membranosa, en forma de capuchón que aloja el

conducto espermático y una zona apical fuerte-

mente esclerosada, con el ápice hendido (fig. 1d)

y que en vista lateral se observa muy aguzada; el

tegmen tiene forma de Y y está unido al lóbulo

medio por una membrana (Fig. 2e).

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA

Este género es endémico de Chile; las especies co-

nocidas se distribuyen entre los 30% latitud sur y

41% latitud sur, desde la planicie costera hasta

2000 m.s.n.m. en zonas precordilleranas de la

Cordillera de la Costa y de Los Andes. Se en-

cuentran sobre vegetación arbustiva de tipo xeró-

filo como matorrales de Chusquea cumingii

(quila), higrófila con Persea lingue (lingue) y

esclerófila con Lithraea caustica (litre), Peumus

boldus (boldo) y Cryptocarya alba (peumo).

BioLocla: Los adultos se alimentan de la corteza de

ramas y ramillas, además de la lámina foliar y pa-

recen poco especializados en cuanto a su hábitat.

No existen antecedentes sobre el ciclo de de-

sarrollo de ninguna de las especies.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DEL GENERO DICTYNEIS

— Patas protorácicas con uñas apendiculadas; cuerpo grueso; tubérculos elitrales cuando están

presentes muy notorios

Hembra

— Patas protorácicas con uñas bifidas; cuerpo alargado; tubérculos elitrales cuando están pre-

sentes no muy notorios

CLAVE PARA HEMBRAS:

Macho

1. Márgenes laterales del pronoto con dos dientes de igual o diferente tamaño (Figs. SA, 6A).. 2

— Márgenes laterales del pronoto con sólo un diente bien desarrollado (Fig. 2A) o una care-

na solevantada que no llega a formar dientes (Fig. 10A)

2. Insectos de gran tamaño, sobre 7 mm. de longitud; élitros con tubérculos muy desarrolla-

dos en el ápice; conducto de la espermoteca siempre muy largo y enrollado; cápsula con el

ápice terminado en un filamento (Fig. 11f y 12g)

— Insectos más pequeños; élitros por lo general con tubérculos dispuestos en 3 hileras longi-

tudinales; conducto de la espermoteca de longitud variable; cápsula con el ápice termina-

do en otra forma

El género Dictyneis: JEREZ R., Y.

3. Apice de cada élitro con tubérculos próximos a la sutura, formando una especie de canal;

diente posterior del pronoto con base ancha y ápice truncado (Fig. 7A) ........ canaliculatus

— Apice de cada élitro con un solo tubérculo sobresaliente sin formar un canal; dientes del

NACO EIIO EME A AS campanensis nov. Sp.

4. Cuerpo alargado; élitros ovalados, con el ápice redondeado y con tubérculos poco eviden-

tes; pilosidad blanquecina y brillante; pronoto rectangular (Fig. 4A); conducto de la esper-

moteca largo y enrollado (Fig. 4E); cápsula con el ápice redondeado (Fig. 11c)........ humilis

— Cuerpo corto; élitros paralelos con el ápice irregular, en el que los tubérculos pueden dar

una apariencia escalonada; pilosidad opaca, a veces con un diseño a modo de una faja

oblicua de color blanquecino; pronoto de otra forma; conducto de la espermoteca de lon-

gitud variable; cápsula con ápice no redondeado (Fig. 110) ...........onconocincnnonionicccononncanaranonnonos

5. Pronoto con el diente posterior más desarrollado (Fig. 6A); pilosidad fina, opaca y densa,

de color café terroso; élitros con el ápice irregular y los tubérculos no forman un canal;

conducto de la espermoteca muy corto y unido directamente a la bursa copulatriz (Fig.

cD)icapsulalbastante coa da terrosus

— Pronoto con ambos dientes bien evidentes; pilosidad con otro aspecto; élitros con 3 filas

de tubérculos que en el ápice forman una especie de canal; conducto de la espermoteca lar-

Loy ento lado capa A O

6. Dientes del pronoto de igual tamaño, aguzados y bien notorios (Fig. SA); pilosidad del pro-

noto y élitros muy densa, de aspecto escamoso; tubérculos elitrales bien notorios; ápice de

lafcapsulaicuryadoy redondeado quadridentatus

— Dientes del pronoto de distinto tamaño, el posterior más aguzado (Fig. 3A); pilosidad del

pronoto y élitros densa, pero fina; tubérculos elitrales poco aparentes; ápice de la cápsula

AO a o OPONE conspurcatus

7. Elitros con mechones de pelos hirsutos y tres filas de tubérculos longitudinales y sobresa-

lientes que en el ápice tienen un aspecto escalonado; pronoto con una impresión profunda

a cada lado de la línea media; conducto de la espermoteca puede ser muy corto o muy lar-

OU A A AS

— Elitros sin tubérculos y sólo con mechones de pelos hirsutos que sobresalen y se disponen

en forma longitudinal; pronoto sin impresión profunda; conducto de la espermoteca de

longitud intermedia (fig. la) ápice de la cápsula con el ápice curvado y algo redondeado

A E O Ra parvus nov.sp.

8. Pronoto subtrapezoidal con un diente lateral (Fig. 2A); pilosidad general del cuerpo café

amarillenta; segmentos antenales cortos; cápsula fuertemente curvada en U y con el ápice

redondeado (Fig. 11a); conducto de la espermoteca corto (Fig. 2C) .....o............... asperatus

— Pronoto cuadrangular con una carena solevantada (Fig. 10A); pilosidad general del cuer-

po café obscuro; segmentos antenales alargados; cápsula con una curvatura menos acen-

tuada y el ápice aguzado y curvado hacia adentro (Fig. 121); conducto de la espermoteca

¡Aa ao A tE ARRE aid: brevispinus nov. Sp.

Gayana Zool. 55(1), 1991

CLAVE PARA MACHOS

1. Pronoto con sólo un diente evidente a cada lado (Fig. 9B); individuos por lo general miden

menos de marde ni A A

— Pronoto con dos dientes laterales, de desarrollo variable o bien presenta sólo una carena

O a inc

2. Pronoto subcuadrado (Fig. 6B); pilosidad densa y opaca; edeago en vista lateral corto (Fig.

6C); en vista dorsal presenta el ápice ancho; hendidura apical poco profunda (Fig. 6É) .......

A a o E O O o e a terrosus

— Pronoto y pilosidad con otra forma y aspecto; edeago en vista dorsal más alargado; hendi-

dura apical muy profunda con los bordes internos de aspecto Varlable .....ooooncncnnnnncconmm.o.

3. Elitros sin tubérculos; coxas anteriores sin espinas; edeago en vista lateral alargado (Fig.

9D) con el ápice no aguzado y curvado hacia abajo; hendidura apical profunda, de bordes

Internos paralelos attention coca tco sti iio tano ireincoiin oi cs orta oia RANCIO parvus nov. Sp.

— Elitros con tubérculos más o menos evidentes; coxas anteriores con una espina a ambos la-

dos del proesterno; edeago y hendidura apical CON OtTO ASPECÍO ..ooooociccccccocconconconconconccnncnnnoos

4. Tubérculos elitrales poco notorios y más bien con mechones de pelos; edeago en vista late-

ral corto; en vista dorsal, el ápice tiene forma subtrapezoidal, con base curva y la hendidu-

ra apical profunda y con los bordes internos paralelos (Fig. 2D) ........................... asperatus

— Tubérculos elitrales bien notorios; edeago en vista lateral alargado; el ápice aguzado y cur-

vado hacia abajo (Fig. 10C); en vista dorsal el ápice tiene forma semiovalada, de base rec-

ta; hendidura apical profunda, con los bordes internos curvos (Fig. 10D) ..oooooonnnnn......

E Uat brevispinus nov. sp

S. Pronoto con dos dientes evidentes aunque el posterior está más acentuado (Fig. 3B); el

edeago en vista lateral está curvado en la parte media (Fig. 3D); hendidura apical de bor-

des internos curvos, con los extremos doblados hacia abajo (Fig. 1D) ............ conspurcatus

— Pronoto sólo con una carena solevantada que a veces puede insinuar dientes; edeago de

O A E A Ani ra

6. Pilosidad del cuerpo muy densa y de aspecto escamoso; ápice de los élitros abrupto e irre-

gular; coxas anteriores con una espina; edeago en vista lateral corto (Fig. 5D) con el ápice

de forma subtrapezoidal; hendidura apical poco profunda, de bordes contiguos, rectos y

divergente: col A quadridentatus

— Pilosidad menos densa y sin aspecto escamoso; coxas anteriores sin espina; edeago en vista

lateral más elongado y de otra forma; élitros sin tubérculos y redondeados en el ápice ........

7. Individuos pequeños, inferiores a 6 mm.; pronoto subcuadrado (Fig. 4B) y con una carena

solevantada que no forma dientes; ápice del edeago semiovalado; hendidura apical de bor-

des Internosicurvos y divergente humilis

El género Dictyneis: JEREZ R., V.

— Individuos de gran tamaño, sobre 6 mm. de longitud; pronoto de otra forma y con una Ca-

rena solevantada que insinúa dientes; ápice y hendidura de forma variable

8.- —Pronoto sólo con el diente posterior ligeramente insinuado (Fig. 7B); élitros con tubércu-

los muy poco desarrollados en el extremo apical; edeago con el ápice rectangular; hendidu-

ra apical profunda y estrecha con bordes paralelos y divergentes en la punta (Fig. 7D)

canaliculata

— Pronoto con dos dientes insinuados levemente (Fig. 8B); élitros sin tubérculos; edeago con

el ápice ovalado; hendidura apical poco profunda con bordes internos curvos y convergen-

tes en el ápice (Fig. 8C)

Dictyneis asperatus (Blanchard)

Figuras 2 y lla

Myochrous asperatus Blanchard, 1851:544-545

Dictyneis asperatus Baly, 1865:435; Philippi,

1887:167; Lefevre, 1885:120 Clavareau,

1914:128; Blackwelder, 1946:664 Bechyné,

1953:260.

LocALIDAD TIPO: Santa Rosa, Provincia de Los An-

des. V Región.

Material tipo examinado: dos sintipos hembras

conservados en el M.N.H.N. Paris. Uno de ellos

etiquetado 15-43/Sta. Rosa, “Myochrous aspera-

tus B.” (etiqueta manuscrita de Blanchard) es de-

signado lectotipo. Un ejemplar etiquetado 15-43

es designado paralectotipo.

Diacnosis: Insectos pequeños; pronoto unidenta-

do; segmentos antenales cortos; cuerpo ovalado y

corto, de color pardo obscuro y pubescente.

Elitros cortos con tres hileras longitudinales de

tubérculos pequeños y una faja oblicua de pelos

finos y blanquecinos formando un dibujo en V.

DESCRIPCIÓN

HemBRA. Largo: 5-6 mm. (n= 10).

Cabeza: De color pardo; pilosidad amarillenta y

gruesa, divergente a la sutura; antenas de color

café rojizo con segmentos cortos.

PronoTO: Subtrapezoidal, superficie convexa, irre-

gular con una impresión a cada lado del disco;

bordes laterales con un diente obtuso delante del

tercio posterior (Fig. 2A); puntuación grande,

campanensis

densa y profunda, formando celdillas contiguas;

pilosidad amarillenta, abundante y más o menos

gruesa, repartida en toda la superficie del disco.

Enrrros: Bordes laterales paralelos, menos de dos

veces el largo del pronoto; superficie débilmente

convexa, rugosa y con tres filas de tubérculos que

sobresalen en el tercio posterior. En el ápice, los

tubérculos forman una especie de canal. Pilosi-

dad amarillenta, más corta y gruesa que la del

pronoto, pero mucho más densa formando en el

tercio posterior una faja oblicua a veces ama-

rillenta o bien de color café oscuro. Callo hume-

ral poco anguloso.

GeNITALIa: Cápsula de la espermoteca curvada en

U y con el ápice redondeado (Fig. 11a); ducto

capsular corto (Fig. 2C).

Macho: Largo: 3-4 mm. (n= 10)

Difiere de la hembra por ser de tamaño más pe-

queño y por el aspecto más elongado del cuerpo y

las coxas anteriores presentan una espina a cada

lado del proesterno.

Pronoro: De forma cuadrangular, con un diente

aguzado en el margen lateral y dos fuertes impre-

siones laterales (Fig. 2B). Tubérculos de los

élitros menos aparentes formando mechones de

pelos que sobresalen; fémures con espinas aguza-

das.

GeEnITALIa: Edeago corto en vista lateral (Fig. 2E);

en vista dorsal el ápice presenta forma subtrape-

zoidal y la hendidura apical tiene los bordes inter-

nos rectos (Fig. 2D).

Gayana Zool. 55(1), 1991

Amm

wuwcgo

FIG. 2.- Dictyneis asperatus: A) Pronoto hembra, vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Genitalia femenina: c:

conducto de la espermoteca; gl: glándula vaginal; ov: oviducto; ovip: ovipositor; re: recto; D) Edeago, ápice, vista dorsal; E)

Edeago, vista lateral, t: tegmen; za: zona apical del lóbulo medio; zb: zona basal.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Conocida hasta ahora sólo

del sur de Chile, desde Chovellén, 35% 55” latitud

sur, hasta Curanilahue, 37% 26” latitud sur.

PLANTA HOSPEDADORA: Se ha recolectado sobre Aris-

totelia chilensis (Ímaqui), Lomatia dentata (avella-

nito) y Lomatia hirsuta (radal).

REGISTRO DE LOCALIDADES: 51 ejemplares examinados:

CHILE. PROVINCIA DE CAUQUENES: Chovellén, diciembre (1

ej., L. Peña); PROVINCIA DE ÑUBLE: Tregualemu, enero (4 ej.

L. Peña), febrero (14 ej. L. Peña). Nuble, Cerro Cayumanqui,

abril (15 ej. L. Peña); Ñuble, Nogeche, diciembre (2 ej. L. Pe-

ña). PROVINCIA DE CONCEPCIÓN: Concepción, cerro Caracol,

abril (2 ej. H. Ibarra); Ramuntcho, diciembre (1 ej. V. Jerez);

Quillón, abril (1 ej. L. Peña); Lirquén, abril (7 ej. V. Jerez);

PROV. DE ARAUCO: Curanilahue, noviembre (4 ej. A. Queza-

da).

Dictyneis conspurcatus (Blanchard)

Figuras 3, 1d y 11b

Myochrous conspurcatus Blanchard, 1851:545

Dictyneis conspurcatus Baly, 1865:435; Philippi,

1887:167; Lefevre, 1885:120; Clavareau,

1914:128; Blackwelder, 1946:664; Bechy-

né, 1953:260.

LocaLIDAD TIPO: Concepción Provincia de Concep-

ción. VIII Región.

Araucanía: IX Región.

MATERIAL TIPO EXAMINADO: Tres sintipos (1 hembra y

dos machos) conservados en el M.N.H.N. Paris.

Una hembra, con etiqueta 15-43 y otra manuscri-

ta de Blanchard “Myochrous conspurcatus B1”

es designado lectotipo.

El género Dictyneis: JEREZ R., Y.

Dos machos, numerados 15-43 son designados

paralectotipos.

Diacnosis: Insectos pequeños; pronoto con bordes

laterales bidentados; el diente posterior más agu-

zado, en particular en las hembras; tubérculos

elitrales forman un canal en el ápice.

DESCRIPCIÓN

HemBRa: Largo: 5-6 mm. (n= 10)

Cabeza: Antenas café rojizo, segmentos alargados.

Pronoro: Forma trapezoidal, superficie irregular,

débilmente convexa y con una impresión a cada

lado; puntuación grande formando celdillas; bor-

1mm

des laterales bidentados, diente posterior más

aguzado (Fig. 3A); pilosidad larga, pero no muy

densa.

ELiTros: Los bordes laterales se angostan progresi-

vamente hacia el ápice; superficie del disco con-

vexa con tres filas de tubérculos poco salientes;

pilosidad más corta y densa que la del pronoto;

en el tercio posterior forma una faja oblicua de

pelos café obscuro o bien blanquecinos; pun-

tuación más grande que la del pronoto.

GenITALIa: Cápsula de la espermoteca con el ápice

aguzado y curvado hacia adentro (Fig. 11b); el

ducto capsular es muy largo, enrollado y se dilata

en la zona de unión con la vagina (Fig. 3C).

FIG. 3.- Dictyneis conspurcatus. A) Pronoto hembra, vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Genitalia, hembra: c:

conducto de la espermoteca; gl: glándula vaginal; ov: oviducto; ovip: ovipositor; re: recto; sp: cápsula de la espermoteca;

vag: vagina; D) Edeago, vista lateral; E) Edeago, ápice, vista dorsal.

Gayana Zool. 55(1), 1991

Macho: Largo: 4-5 mm. (n= 10)

Segmentos antenales largos; pronoto subcuadra-

do con bordes laterales bidentados, diente poste-

rior aguzado (Fig. 3B).

ELrrros: Casi del mismo ancho que el pronoto con

el ápice redondeado; tubérculos sobresalientes

dispuestos en 3 hileras longitudinales.

GENITALIA: Edeago en vista lateral es elongado y

tiene el extremo apical curvado ligeramente ha-

cia abajo (Fig. 3D); en vista dorsal se aprecia que

el ápice tiene forma casi rectangular; los bordes

internos de la hendidura apical son redondeados

(Fig. 3E) y curvados hacia la parte ventral (Fig.

1d).

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: El límite septentrional se

encuentra en El Manzano, Cordillera de Los An-

des, 34% 06” latitud sur y se extiende hasta Cura-

nilahue, 37% 26” latitud sur.

PLANTA HOSPEDADORaA: Se ha recolectado sobre ma-

torrales de Chusquea quila (quila) y Lithraea

caustica (litre).

REGISTRO DE LOCALIDADES: 87 ejemplares examinados.

CHILE. PROVINCIA CORDILLERA: El Manzano, diciembre (1

ej. T. Ramírez); PROVINCIA DE SANTIAGO: Apoquindo, marzo

(2 ej. A. Grez.); PROVINCIA DE MELIPILLA: Piche Alhue, no

viembre (l ej. L. Peña). PROVINCIA DE VALPARAISO: Valpa-

raíso, Mantagua, octubre (11 ej. J. Solervicens); Laguna Ver-

de, octubre (1 ej. M. Pino); Puertas Negras, mayo (1 ej. M. Pi-

no); Viña, El Salto, junio (3 ej. M. Pino); Viña del Mar, sep-

tiembre, octubre (6 ej. M. Pino); Placilla, octubre (2 ej. M. Pi-

no); Valparaiso, Cuesta Pucalán, septiembre, octubre y di-

ciembre (8 ej. L. Peña); Placilla, septiembre, octubre (3 ej. M.

Pino); PROVINCIA DE ACONCAGUA: Saladillo, noviembre (2 ej.

M. Pino); Concón, agosto (4 ej. M. Pino); Quilpué, Paso Hon-

do, septiembre (1 ej. M. Pino); PROVINCIA DE QUILLOTA: Li-

mache, Quebrada Alvarado, noviembre (1 ej. M. Pino); Gra-

nizo, noviembre (1 ej. M. Pino); Ocoa, junio (5 ej. V. Jerez);

cerro La Campana, octubre, noviembre (5 ej. M. Pino); PRO

VINCIA DE COLCHAGUA: San Fernando, Sierra Bellavista, no-

viembre (2 ej. L. Peña); PROVINCIA DE ÑUBLE: Cobquecura,

febrero (3 ej. M. Pino); PROVINCIA DE CONCEPCIÓN: Lirquén,

abril (11 ej. V. Jerez); Concepción, octubre (7 ej. T. Cekalo-

vic); Hualpén, octubre (2 ej. A. Quezada); PROVINCIA DE

ARAUCO: Curanilahue, noviembre (4 ej. A. Quezada).

Dictyneis humilis (Blanchard)

Figuras 4 y 11c

Myochrous humilis Blanchard, 1851:545

Dictyneis humilis Baly, 1865:435; Philippi,

1887:167; Lefevre, 1885:120; Clavareau,

1914:128; Blackwelder, 1946:664; Bechy-

né, 1953:260.

LocALIDAD TIPO: Santa Rosa. Provincia de Los An-

des. V Región.

MATERIAL TIPO EXAMINADO: Dos sintipos hembra con-

servados en el M.N.H.N. Paris. Una hembra con

etiquetas 15/43 Sta. Rosa etiqueta manuscrita de

Blanchard “Myochrous humilis B1”, es designa-

do lectotipo. Un ejemplar numerado 15/43 es de-

signado paralectotipo.

DiacNosIs: Cuerpo alargado y ovalado; pilosidad

blanquecina y amarillenta; las hembras presentan

en los bordes laterales del pronoto, dos dientes de

base ancha y ápice redondeado, de longitud va-

riable y que en los machos se insinúan levemente.

DESCRIPCIÓN

HemBra Longitud: 5.5-6 mm. (n= 10).

Cabeza Pilosidad blanquecina, amarillenta, densa

y gruesa, antenas de color café rojizo con los seg-

mentos antenales cortos.

PronoTo: Rectangular, con los bordes anteriores

redondeados; disco con una impresión débil a ca-

da lado; pilosidad blanquecina, densa y fina; bor-

des laterales con dos dientes poco notorios y que

más bien tienen el aspecto de un solevantamien-

to de la carena lateral.

Enrrros: Alargados y ovalados, un poco más

anchos que el pronoto; ápice más o menos redon-

deado; superficie rugosa y convexa con 3 filas de

tubérculos poco salientes, principalmente sobre

los dos tercios anteriores, indicados solamente

por mechones de pelos hirsutos y sobresalientes;

pilosidad más corta y densa que la del pronoto y

de color blanquecino. Callo humeral poco angu-

loso.

El género Dictyneis: JEREZ R., Y.

Am m J

FIG. 4. Dictyneis humilis. A) Pronoto hembra, vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal: C) Edeago, vista lateral; D)

Edeago, ápice; E) Genitalia hembra: c: conducto de la espermoteca; gl: glándula vaginal; ov: oviducto; Ovip: ovipositor; re:

recto; vag: vagina; sp: cápsula de la espermoteca.

GenrTaLta: Cápsula de la espermoteca con el ápice

redondeado (Fig. 11c), ducto capsular muy largo

y enrollado, se dilata en la zona de unión con la

vagina (Fig. 4E).

Macho: Longitud: 5-6 mm. (n=10)

Difiere de la hembra por presentar los segmentos

antenales largos, de color rojizo; cuerpo más an-

gosto que la hembra. Pronoto de forma sub-

cuadrada; dientes laterales poco notorios (Fig.

4B); impresiones del disco más acentuadas.

Elitros con pilosidad más corta y gruesa que la

del pronoto.

Geniratia: Edeago con el ápice curvado hacia la

región ventral y presenta una curvatura muy

pronunciada en la zona de inserción del tegmen

(Fig. 4C); en vista dorsal el extremo apical tiene

forma ovalada y la hendidura presenta los bordes

internos casi rectos, pero divergentes en el extre-

mo (Fig. 4D).

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Se conoce desde El

Cobre, 32% 52” latitud sur hasta Villa Alemana.

33% 05” latitud sur.

PLANTA HOSPEDADORA: Se ha recolectado sobre ma-

torral xerófilo de Chusquea quila a 700 m.s.n.m.

en la Cordillera de la Costa.

REGISTRO DE LOCALIDADES: 36 ejemplares examinados.

CHILE. PROVINCIA DE PETORCA: El Cobre, julio (2 ej. J. So-

lervicens); PROVINCIA DE QUILLOTA: cerro La Campana, mar-

z0 (1 ej. J. Solervicens); abril, mayo (13 ej. J. Solervicens); ju-

nio (3 ej. J. Solervicens); julio (1 ej. J. Solervicens); septiembre:

(6 ej. J. Solervicens); octubre (7 ej. J. Soie, vicens); PROVINCIA

DE VALPARAISO: Villa Alemana. octubre (3 e). J. Solervicens).

Gayana Zool. 55(1), 1991

Dictyneis quadridentatus (Philippi y Philippi)

Figuras 5 y 11d

Myochrous quadridentatus Phil y Phil. 1864:389

(nec Papp, 1949:14)

Dictyneis quadridentatus Baly, 1865:435; Philip-

pi, 1887:167; Lefevre, 1885:120; Blackwel-

der, 1946:664; Bechyné, 1953:260; Ca-

mousseight, 1980:10.

LOCALIDAD TIPO: Chile

MATERIAL TIPO EXAMINADO. Dos sintipos hembras con-

servados en el M.N.H.N. Santiago de Chile. Un

ejemplar sin abdomen, etiquetado 1086, Typus

“Myochrous quadridentatus”, Chile, M.N.H.N.

Tipo N* 3108, es designado lectotipo. Un

ejemplar completo, etiquetado 1086, P-Typus,

“Myochrous quadridentatus”, Chile, M.N.H.N.

Tipo N* 3109, es designado paralectotipo.

Diacnosis Bordes laterales del pronoto claramente

bidentados en la hembra: ápice de los élitros se

angostan progresivamente y en la sutura, los tu-

bérculos sobresalen en forma angulosa y notoria.

Pilosidad corta y gruesa, de aspecto escamoso.

pam

DESCRIPCIÓN

HemBRa: Longitud: 6.0 mm. (n= 10)

Cageza: Sutura fronto clipeal notoria; pilosidad de

tipo escamosa y de color amarillento. Clipeo con

puntuación grande y contigua; antenas, palpos

labiales y maxilares de color café rojizo.

PronoTo. Rectangular con una fuerte impresión a

cada lado del disco y completamente cubierto por

pubescencia gruesa, de aspecto escamoso; márge-

nes laterales bidentados, ambos dientes aguzados

y muy notorios (Fig. 5A).

Enrrros: Presentan tres hileras de tubérculos for-

mando carenas; callo humeral anguloso y sobre-

saliente; márgenes laterales se angostan hacia el

ápice. Superficie del disco rugosa; puntuación

grande, pero esparcida; pilosidad muy corta, den-

sa y de aspecto escamoso; en el tercio posterior

hay una faja de pelos oblicua en forma de V, de

color blanquecino.

GenrraLla: Cápsula de la espermoteca con el ápice

curvado (Fig. 11 d); conducto de la espermoteca

largo y enrollado.

FIG. 5.- Dictyneis quadridentatus. A) Pronoto hembra, vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Edeago, ápice; D)

Edeago, vista lateral.

El género Dictyneis: JEREZ R., V.

Macho. Longitud: 5 mm. (n= 5).

Difiere de la hembra por presentar antenas con

segmentos más largos y delgados. Pronoto sub-

cuadrado, márgenes laterales bidentados, pero los

dientes están menos desarrollados; pilosidad den-

sa. Apice de los élitros abrupto e irregular. Coxas

anteriores con una espina pequeña a ambos lados

del proesterno.

GenrTaLia: En vista dorsal el extremo apical del

edeago es subtrapezoidal; la hendidura tiene los

bordes internos rectos y ligeramente separados

en el extremo (Fig. 5C); en vista lateral, el edeago

es corto y ligeramente curvado (Fig. 5D).

DISTRIBUCIÓN ALTITUDINAL: Se encuentra en sectores

de la planicie costera hasta 1.000 m.s.n.m. en la

Cordillera de la Costa.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Se conoce del sector cerro

La Campana, 32% 52” latitud sur y Valparaíso,

33 02” latitud sur.

PLANTA HOSPEDADORA: Se ha recolectado en bosques

de Nothofagus oblicua var. macrocarpa (roble),

bosque higrófilo con Persea lingue (lingue) y ma-

torral xerófilo de Chusquea cumingii (quila) pre-

sentes en el Parque Nacional La Campana.

REGISTRO DE LOCALIDADES: 27 ejemplares examinados.

CHILE. PROVINCIA DE QUILLOTA: Quillota, cerro La Campa-

na, marzo, abril (1 ej. J. Solervicens); mayo (7 ej. J. Solervi-

cens); agosto (2 ej. J. Solervicens); septiembre (3 ej. C. Vivar);

octubre (8 ej. J. Solervicens); diciembre (3 ej. C. Vivar y J. So

lervicens); enero (1 ej. C. Vivar); PROVINCIA DE VALPARAISO

El Salto, octubre (1 ej. J. Solervicens); Mantahua, octubre (1

ej. J. Solervicens).

Dictyneis terrosus (Phil. y Phil.)

Figuras 6, 1le

Myochrous terrosus Phil. y Phil. 1864:390 (nec

Pap, 1949:14)

Dictyneis terrosus Baly, 1865:435; Philippi

1887:167; Lefevre, 1885:120; Blackwelder,

1946:664; Bechyné, 1953:260; Camous-

seight, 1980:10.

LOCALIDAD TIPO: Chile

MATERIAL TIPO EXAMINADO: 1 sintipo hembra con eti-

quetas 1088, Typus, “Myochrous terrosus Ph”.

Tipo N* 3110, M.N.H.N. Santiago. Chile, es de-

signado lectotipo.

DiacNosis: Insectos pequeños, inferiores a 3 mm.

de longitud; pilosidad corta, densa y opaca de co-

lor café terroso.

DESCRIPCIÓN

HemBRaA: Longitud: 4.5-4.8 mm. (n = 6).

Caza: Coloración café muy obscuro; pilosidad fi-

na y amarillenta; antenas largas, de color café ro-

jizo y alcanzan el primer tercio de los élitros.

ProNoTO: Rectangular, con los bordes laterales bi-

dentados, el diente anterior pequeño e inconspi-

cuo, el segundo de base ancha y ápice aguzado

(Fig. 6A); disco con una fuerte impresión a cada

lado; puntuación grande formando celdillas, pero

poco profundas; pilosidad larga, fina de color

amarillento y esparcida. Elitros más anchos que

el pronoto; callo humeral sobresaliente; 3 filas de

tubérculos que convergen en el ápice. Pun-

tuación grande y profunda; pilosidad corta y den-

sa.

GenrTaLia: Cápsula de la espermoteca curvada en

forma de U, con el ápice redondeado (Fig. 6D,

11e); conducto de la espermoteca corto y del mis-

mo grosor en la zona de unión con la vagina (Fig.

6D).

Macho: Longitud: 4.5 mm (n= 3).

Dimorfismo sexual poco acentuado. Pronoto con

dos fuertes impresiones laterales; diente anterior

sólo se insinúa con una curvatura sobresaliente y

el diente posterior tiene el ápice aguzado (Fig.

6B).

GenriTaLIa: Edeago en vista lateral corto y bastante

curvado en el tercio posterior (Fig. 6C); en vista

dorsal el ápice es ancho y de forma semiovalada

con los márgenes laterales algo curvados; el

extremo distal es ancho y la hendidura es corta

con los bordes internos semicurvos y están sepa-

rados (Fig. 6ÉE).

Gayana Zool. 55(1). 1991

FIG. 6.- Dictyneis terrosus. A) Pronoto hembra, vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Edeago, vista lateral; D)

Genitalia, hembra: c: conducto de la espermoteca; gl: glándula vaginal; ov: oviducto; ovip: Ovipositor; re: recto; sp: cápsula

de la espermoteca; vag: vagina; E) Edeago, ápice.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Se conoce desde isla Quiri-

quina, 36% 47 latitud sur hasta Valdivia, 39% 48”

latitud sur.

PLANTA HOSPEDADORA: Desconocida.

REGISTRO DE LOCALIDADES: 9 ejemplares examinados.

CHILE. PROVINCIA DE CONCEPCIÓN: Talcahuano, isla Quiri-

quina, octubre (2 ej. F. Silva); Dichato, Concepción, febrero

(3 ej. P. Vidal); Concepción, Hualpén, agosto (2 ej. V. Jerez);

PROVINCIA DE ARAUCO: Contulmo, octubre (1 ej. J. Solervi-

cens); PROVINCIA DE VALDIVIA: Llancacura, Valdivia, enero

(l ej. N, Hichins).

Dictyneis canaliculatus Jacoby

Figs. 1c, 7 y 11f

Dictyneis canaliculata Jacoby 1900:502; Black-

welder, 1946:664; Bechyné, 1953:260.

LocALIDAD TIPO: Chile

MATERIAL TIPO EXAMINADO: Fototipo de una hembra

conservada en el B.M.N.H. London.

Diacnosis: Insectos que sobrepasan los 6 mm de

longitud; pronoto bidentado y cuerpo elongado;

pubescencia gris y sólo las hembras presentan en

el ápice de los élitros dos filas de tubérculos diver-

gentes que forman un canal; machos con el ede-

ago elongado.

DESCRIPCIÓN

HemBRa: Longitud: 7-8 mm. (n=8).

Caseza Coloración café obscuro, revestida con

pubescencia blanquecina; antenas de color roji-

ZO.

El género Dictyneis: JEREZ R., V.

PronoTo: Forma rectangular con el margen lateral

bidentado; el diente anterior es pequeño y el pos-

terior es de base ancha y truncado en el ápice

(Fig. 7A); puntuación a modo de celdillas; disco

con una impresión a ambos lados. Escutelo trans-

verso y pubescente; pilosidad de color amarillen-

ta, larga, fina y esparcida. Elitros más anchos que

el pronoto, se angostan hacia el ápice; disco fuer-

temente punteado, rugoso con 4 filas de tubércu-

los que en el ápice sobresalen y forman una espe-

cie de canal; pilosidad más corta y densa que la

del pronoto, de color blanquecino.

GENITALIA: La cápsula de la espermoteca termina

en un filamento aguzado y fino (Fig. 11f); el con-

ducto capsular es muy largo y se presenta enrolla-

do.

nia

SÍ

Macho: Longitud; 6-7 mm. (n= 5).

Color general del cuerpo café cobrizo brillante,

pronoto cuadrangular con el diente posterior más

evidente (Fig. 7B). Elitros del mismo ancho que

el pronoto, ovalados, sin tubérculos en el disco, y

sólo con mechones de pelos hirsutos sobresalien-

tes; en el ápice los tubérculos son muy pequeños

y no forman el canal característico de la hembra.

Pilosidad blanquecina.

GENITALIA: El edeago en vista lateral es muy elon-

gado y presenta sólo una leve curvatura (Fig.

7C); en vista dorsal, el ápice del edeago tiene for-

ma rectangular, con los bordes laterales parale-

los; la hendidura del ápice es profunda. estrecha

y de lados paralelos (7D).

FIG. 7.- Dictyneis canaliculatus. A) Pronoto hembra, vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Edeago, vista lateral:

D) Edeago ápice, vista dorsal.

Gayana Zool. 55(1), 1991

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Se conoce desde Santiago,

33% 42” latitud sur hasta Talca, 35% 45” latitud

sur.

PLANTA HOSPEDADORA: Se ha recolectado en vegeta-

ción de tipo esclerófila. No se conocen datos

sobre plantas específicas.

REGISTRO DE LOCALIDADES: 2 3 ejemplares examinados.

CHILE. PROVINCIA DE QUILLOTA: Limache, Sta Rosa, di-

ciembre, enero (1 ej. M. Pino); PROVINCIA DE VALPARAÍSO

Los Perales, enero (1 ej. J. Solervicens); Colliguay, enero (1 ej.

R. Bobadilla); septiembre (2 ej. M. Pino); Paso del Agua, abril

(1 ej. M. Pino); El Salto, abril (10 ej. M. Pino); PROVINCIA DE

CACHAPOAL: cerro Cantillana, diciembre (1 ej. J. Solervicens);

Piche Alhue, noviembre (3 ej. L. Peña); PROVINCIA DE TaL

Ca: Los Cipreses, enero (3 ej. M. Pino).

Dictyneis campanensis nov. Sp.

Figuras 8 y 12g

LocaLipab Tiro: Parque Nacional La Campana, sec-

Ea) A,

tor Granizo en el cerro La Campana, Provincia

de Quillota.

MATERIAL TIPO: HoLoTIPO. Una hembra. Provincia de

Quillota. Quillota, cerro La Campana, 8-8-1979,

J. Solervicens col, 450 m.s.n.m. Depositado en

colección M.Z.U.C.

Paratipos: 1 macho, Quillota, cerro La Campana,

24-1-1979, J. Solervicens col. ex bosque higrófilo,

700 m.s.n.m.; 1 macho, Quillota, cerro La Cam-

pana, 11-X11-1979, C. Vivar col. ex bosque escle-

rófilo, 680 m.s.n.m.; 1 hembra, Quillota, cerro La

Campana, 24-1-1979, J. Solervicens col.; 1

hembra de cerro La Campana, 22-11-1973, J. So-

lervicens col. Depositados en M.Z.U.C.

Diacnosis: Los individuos sobrepasan los 6 mm de

longitud; color general del cuerpo café cobrizo

brillante; las hembras se reconocen por la presen-

cia de un par de tubérculos muy notorios en el

ápice de los élitros y que en los machos están

ausentes.

4mm

FIG. 8.- Dictyneis campanensis nov. sp. A) Pronoto hembra, vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Edeago, ápice;

D) Edeago, vista lateral; E) Genitalia, hembra: c: conducto de la espermoteca: gl: glándula vaginal; o: oviducto; Ovip: ovipo-

sitor; re: recto; sp: cápsula de la espermoteca.

El género Dictyneis: JEREZ R., V.

DESCRIPCIÓN

HEMBRA: Longitud: 7-8 mm. (n= 10).

Caseza: Frente y vértice con puntuación grande y

densa; pilosidad blanquecina y gruesa, divergente

en la parte media; labro subcircular con una esco-

tadura en el margen anterior; antena con el tercer

segmento casi dos veces más largo que el cuarto.

PronoTo: Forma rectangular; superficie del disco

con una impresión a cada lado; puntuación gran-

de y densa, a modo de celdillas; pilosidad fina y

esparcida; bordes laterales con un diente de base

ancha y ápice truncado (Fig. 8A); en algunos

ejemplares puede haber un diente anterior pe-

queño.

ELrrros: Más anchos que el pronoto, con superfi-

cie rugosa; cada élitro lleva dos carenas longitudi-

nales, la más externa termina en un tubérculo

sobresaliente y redondeado, en el ápice de cada

élitro; puntuación grande y esparcida; pilosidad

fina, pero densa, formando 3 hileras longitudina-

les de mechones de pelos poco sobresalientes.

GenITaLIa: Cápsula de la espermoteca con el extre-

mo distal curvado (Fig. 12g) y unida a la vagina

por un conducto muy largo y enrollado (Fig. 8E).

Macho: Longitud: 6-7 mm. (n= 10).

Difiere de la hembra por presentar el pronoto

cuadrangular y con los dientes laterales menos

desarrollados (Fig. 8B); élitros sin tubérculos, del

mismo ancho que el pronoto, con mechones de

pelos hirsutos dispuestos longitudinalmente y an-

gostándose en el ápice.

Genitalia: el edeago en vista lateral es elongado

(Fig. 8D) y poco curvado; el ápice en vista dorsal

tiene forma ovalada con la base recta; la hendidu-

ra apical es corta y con los bordes internos curvos

(Fig 80).

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Conocida sólo del Parque

Nacional La Campana, 32% 52” latitud sur.

PLANTA HOSPEDADORA: Se encuentra en bosque escle-

rófilo sobre Cryptocaria alba (peumo), Lithraea

caustica (litre), Peumus boldus (boldo), Schinus

latifolius (molle) y en menor proporción se en-

cuentra en Persea lingue (lingue).

91919)

£LL

REGISTRO DE LOCALIDADES

dos.

ejemplares examina-

CHILE. PROVINCIA DE QUILLOTA: Quillota, cerro La Campa-

na, entre septiembre de 1978 a agosto de 1979 (217 ej. J. So-

lervicens, C. Vivar y V. Jerez); Limache, Granizo, sep-

tiembre, octubre ($ ej. M. Pino).

Dictyneis parvus nov. sp.

Figuras la, 9 y 12h

LocaLIDAD Tipo: Provincia de Valparaíso, cerro El

Roble.

MareriaL Tipo: Holotipo hembra. Chile, Valpa-

raíso, cerro El Roble, 7-8 diciembre, 1980. M. El-

gueta col. bajo Mulinum spinosum. 2100

m.s.n.m. Depositado en el M.N.H.N. Santiago.

Paratipos:- 1] hembra y 1 macho: V. Tinguiririca,

Quebrada Olmedo, 5 octubre, 1979, J. Solervi-

cens col. Depositados en el M.N.H.N. Santiago.

2 machos: Chile, Santiago, Alto Cantillana, 21

diciembre, 1980, M. Elgueta col. depositados en

colección M.Z.U.C.

Diacnosis: Individuos pequeños, menos de 4.5 mm

de longitud; pronoto con sólo un diente aguzado;

élitros sin tubérculos, con el ápice redondeado.

DESCRIPCIÓN

HemBRA: Longitud: 4.5-4.8 mm. (n= 5).

Caseza: Pilosidad amarillenta; puntuación grande

formando celdillas contiguas.

PronoTO: Cuadrangular, con una débil impresión a

ambos lados de la línea media: márgenes laterales

con un diente aguzado bien notorio (Fig. 9A);

puntuación grande formando celdillas contiguas;

pilosidad fina, blanquecina y esparcida. Elitros li-

generamente más anchos que el pronoto, sin tu-

bérculos ni mechones de pelos hirsutos; callo hu-

meral anguloso; puntuación grande, profunda,

de tamaño similar al pronoto; pilosidad fina y

densa.

Gayana Zool. 551), 1991

FIG. 9. Dictyneis parvus nov. sp. A) Pronoto hembra, vista

dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Edeago, ápice vista

dorsal; D) Edeago, vista lateral.

GenrtTaLia: Cápsula de la espermoteca con una

fuerte curvatura, ápice algo redondeado y curva-

do (fig. 12h) y conducto capsular, de menor longi-

tud que en las especies descritas anteriormente y

no enrollado (Fig. la).

Macho: Longitud: 4.5 mm. (n= 3).

PronoTo. Cuadrangular, bordes laterales unidenta-

dos (Fig. 9B); élitros casi del mismo ancho que el

pronoto, con puntuación semejante y con

mechones de pelos hirsutos y amarillentos dis-

puestos longitudinalmente.

GenITaLla: El edeago en vista lateral es elongado y

presenta el extremo distal aguzado y curvado ha-

cia abajo (Fig. 9D); en vista dorsal, el ápice es de

forma rectangular, de lados paralelos, con el

extremo distal aguzado; la hendidura es profunda

y con los bordes internos rectos y separados en

toda su extensión.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Se conoce en la Cordillera

de la Costa entre el cerro El Roble 32? 58” latitud

sur, hasta Los Queñes, 35 00” latitud sur.

PLANTA HOSPEDADORA: Se ha recolectado bajo plan-

tas de Mulinum spinosum y Mutisia sp. entre

2000 a 2200 m.s.n.m. en la Cordillera de la Costa

y los Andes.

MATERIAL EXAMINADO Y REGISTRO DE LOCALIDADES 13

ejemplares examinados.

CHILE. PROVINCIA CORDILLERA: El Manzano, octubre (1 ej.

E. Charlin); PROVINCIA DE VALPARAÍSO: cerro El Roble, no-

viembre (1 ej. M. Elgueta); cerro La Campana, octubre (2 ej.

M. Elgueta); PROVINCIA DE CACHAPOAL. Alto Cantillana, di-

ciembre (2 ej. M. Elgueta); Tinguiririca, Quebrada Olmedo,

octubre (3 ej. J. Solervicens); Las Peñas, noviembre (1 ej. P.

Ramirez); Sierra Bellavista, octubre (1 ej. J. Solervicens); PRO

VINCIA DE CURICÓ: Los Quenñes, abril (2 ej. J. Solervicens).

Dictyneis brevispinus nov. Sp.

Figuras 10 y 121

LocaLipapb tiro: Fundo Malcho, Cordillera de

Parral, Provincia de Linares.

MaTeriaL TIPO: Holotipo, hembra de la Cordillera

de Parral, Fundo Malcho, octubre, 1956, L.E.

Peña col. Depositado en colección M.Z.U.C.

Paratipos: 2 machos y 1 hembra, de la misma lo-

calidad depositados en colección M.Z.U.C.

DiaGnosis: insectos de aspecto robusto; pronoto

cuadrangular; disco con dos fuertes impresiones

laterales; las hembras presentan en los márgenes

laterales del pronoto una carena, que insinúa dos

dientes poco evidentes; los machos presentan un

diente lateral y en las procoxas una fuerte espina.

DESCRIPCIÓN

HemBRa: Longitud: 7 mm. (n=2).

Caseza: Pilosidad amarillenta y densa; segmentos

antenales alargados, de color café rojizo.

Pronoro: Cuadrangular con dos fuertes impre-

siones en el disco; puntuación grande formando

celdillas contiguas; pilosidad amarillenta, densa

pero fina; márgenes laterales con una carena que

no llega a formar dientes (Fig. 10A).

Enrrros. Más anchos que el pronoto; callo hume-

ral anguloso; superficie del disco rugosa, con tu-

bérculos recubiertos por pilosidad; en el ápice los

tubérculos convergen en forma irregular y en la

parte media se forma una especie de canal; pilosi-

dad muy densa.

GENITALIA: Cápsula de la espermoteca con el ápice

curvado (Fig. 12i); conducto capsular largo y

enrollado.

El género Dictyneis: JEREZ R., V.

A ES

Amm

(ol

FIG. 10. Dictyneis brevispinus nov. sp. A) Pronoto hembra,

vista dorsal; B) Pronoto macho, vista dorsal; C) Edeago, vista

lateral; D) Edeago, ápice vista dorsal.

Macho: Longitud: 6 mm. (n= 3).

Difiere de la hembra por presentar el cuerpo alar-

gado; pronoto cuadrangular, pero los márgenes

laterales presentan un diente poco sobresaliente

de base ancha (Fig. 10B); disco con una impre-

sión a cada lado de la línea media.

ELrrros: Un poco más anchos que el pronoto; tu-

bérculos de los élitros convergen en el ápice, pero

no llegan a formar un canal tan evidente como

en la hembra. Las coxas anteriores presentan una

espina próxima a la articulación con el trocánter.

GENITALIA: En vista lateral, el edeago es elongado,

con una curvatura en la zona media y con el ápi-

ce aguzado y fuertemente curvado hacia abajo

(Fig. 10C); en vista dorsal el ápice tiene forma

ovalada y de base recta; la hendidura apical es

profunda y presenta los bordes internos curvos y

separados (Fig. 10D).

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Se conoce sólo de la Cor-

dillera de Parral, Linares 35% 48” latitud S.

PLANTA HOSPEDADORA: Desconocida.

DISCUSION

A partir del análisis morfológico del material es-

tudiado, podemos evidenciar que el género Dicty-

neis Baly, 1865 comprende un grupo homogéneo

de especies endémicas de Chile que presentan po-

ca variabilidad morfológica intra e interespecífi-

ca. Las especies no presentan una clara aso-

ciación con algún tipo de formación vegetacional

en particular, debido probablemente, a la caren-

cia de registros de sus plantas hospedadoras.

Del análisis de los caracteres genitales feme-

ninos, llama la atención la extraordinaria longi-

tud que en algunas especies presenta el conducto

de la espermoteca. En este aspecto, la estructura

del complejo de la espermoteca y de la genitalia

masculina se revelan como caracteres sistemáti-

cos de importancia.

Por el hecho de carecer de alas metatoráci-

cas, los individuos presentan una baja vagilidad,

tendiendo a permanecer ocultos y protegidos

entre el follaje de sus plantas hospedadoras. Esta

misma característica, probablemente, determina

que las especies tengan áreas de distribución geo-

gráfica restringidas y por ende, vean limitada

su capacidad para colonizar nuevos ambientes.

Así, especies como D. campanensis, D. parvus y

D. brevispinus presentan grados de endemismo,

delimitado por condiciones altitudinales o latitu-

dinales, quedando circunscritas a zonas más o

menos aisladas de la Cordillera de la Costa o de

los Andes.

Con respecto a aspectos bionómicos, la ma-

yoría de las especies se encuentran presentes du-

rante todo el año; no se han realizado estudios

que relacionen la fenología de las plantas hospe-

dadoras con la presencia de los insectos y su acti-

vidad alimenticia y reproductiva.

A partir de la revisión del material tipo y

después que Jerez y Berti (1987) invalidaron la

designación de Baly (1865) para Myochrous pul-

vinosus como especie tipo del género Dictyneis,

en el presente trabajo se designa a Myochrous as-

peratus Blanchard, 1851 como especie tipo del

género, siguiendo las disposiciones del Código de

Nomenclatura Zoológica.

En cuanto a la validez o no del nombre Dicty-

neis, y según las disposiciones del artículo 70 B

del Código de Nomenclatura Zoológica, se some-

terá este problema a la Comisión Internacional

de Nomenclatura Zoológica, quien en última ins-

tancia decidirá si es pertinente o no crear una

nueva entidad genérica.

Gayana Zool. 55(1), 1991

FIG. 11. Cápsula de la espermoteca. a) D. asperatus, b) D. conspurcatus; c) D. humilis; d) D. quadridentatus; e) D. terrosus,

f) D. canaliculatus.

El género Dictyneis: JEREZ R., Y.

FIG. 12. Cápsula de la espermoteca. g) D. campanensis nov.

sp.: h) D. parvus nov. sp. 1) D. brevispinus NOV. Sp.

AGRADECIMIENTOS

La autora agradece muy especialmente al profe-

sor Jaime Solervicens y al Sr. Carlos Vivar por la

gran cantidad de material recolectado por ellos; a

los Srs. Mario Elgueta y Gerardo Arriagada por

facilitar material del Museo Nacional de Historia

Natural y al Sr. Mario Pino (Q.E.P.D.) por facili-

tar material de su colección para este estudio, ad-

quirida recientemente por el M.Z.U.C. Final-

mente agradezco al personal del Laboratorio de

Microscopía Electrónica de la Dirección de In-

vestigación de la Universidad de Concepción, por

su colaboración en el procesamiento de las

muestras.

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Manuscrito aceptado en noviembre de 1990.

Gayana Zool. 55(1): 53-85, 1991 ISSN 0016-531X

THE AMERICAN GENERA OF ASILIDAE (DIPTERA): KEYS FOR

IDENTIFICATION WITH AN ATLAS OF FEMALE SPERMATHECAE

AND OTHER MORPHOLOGICAL DETAILS. VI. TRIBE ATOMOSIINI

HERMANN (LAPHRIINAE), WITH DESCRIPTIONS OF TWO NEW

GENERA AND THREE NEW SPECIES, AND A CATALOGUE OF THE

NEOTROPICAL SPECIES*

LOS GENEROS AMERICANOS DE ASILIDAE (DIPTERA): CLAVES

PARA SU IDENTIFICACION CON UN ATLAS DE LAS

ESPERMATECAS DE LAS HEMBRAS Y OTROS DETALLES

MORFOLOGICOS. VI. TRIBU ATOMOSIINI HERMANN

(LAPHRIINAE), CON DESCRIPCIONES DE DOS NUEVOS GENEROS Y

TRES NUEVAS ESPECIES Y UN CATALOGO DE LAS ESPECIES

NEOTROPICALES

Jorge N. Artigas**, Nelson Papavero*** y Armando L. Serra****

ABSTRACT spermathecae and other morphological details, is given. Two

new genera are described: Aphractia (for Atractia longicornis

A key for the identification of the 17 American genera of Hermann) and Cyphomyiactia (type-species, costai, sp. n.,

Atomosiini Hermann (Laphriinae), with illustrations of from Brazil, Goiás, Goiánia (Campinas)). Two new species of

Dissmeryngodes are described: amapa (type-locality: Brazil,

Amapá, Serra do Navio) and iracema (type-locality: Brazil,

Sáo Paulo, Ribeiráo Preto (Fazenda Iracema). The following

new generic synonymies are proposed: Paratractia Hull. 1862

synonym of Atomosia Macquart, 1838; Cyphotomyia

“This research was supported by the Fundagáo de Williston, 1889 and Protichisma Hermann, synonyms of

Amparo á Pesquisa do Estado de Sáo Paulo (Grants 85/1772: Cerotainia Schiner, 1866; Centrolaphria Enderlein, 1914 and

5, 86/3327-1 and 87/3170-8). Catonomyia Hull, 1962 synonyms of Dissmeryngodes

**Universidad de Concepción-Facultad de Ciencias Hermann, 1912; Josmayala Kaletta, 1978 synonym of

Biológicas y de Recursos Naturales-Departamento de Zoolo- Eumecosoma Schiner, 1866; Lophoceraea Hermann, 1912

gía (Proyectos Dirección de Investigación, U. de Concepción synonym of Hybozelodes Hermann, 1912; Othoniomyia

N%s 20.38.12 y 20.38.17): Hermann, 1912, Sphagolestes Hull, 1962, Voluptarius

***Museu de Zoologia £ Instituto de Estudos Kaletta, 1978 and Jucundus Kaletta, 1978 synonyms of

Avangados, Universidade de Sao Paulo. Pesquisador do Con- Oidardia Hermann, 1912. Rhatimomyia Lynch-Arribálzaga,

selho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico 1882 is unrecognized. A catalogue of the Neotropical species,

(CNPq, Proc. N” 30.0994/79. with several new combination, is added.

** Museu de Zoologia, Universidad de Sao Paulo. Bol-

sista da Coordenagao de Aperfeigoamento do Pessoal de En- KEYwORDs: Insecta. Taxonomy. America. Key. Asilidae.

sino Superior (CAPES). > Atomosiini. Spermatheca. Morphology.

Gayana Zool. 55(1), 1991

RESUMEN

Se presenta una clave para la identificación de los 17 géneros

americanos de Atomosiini (Laphriinae), con ilustraciones de

espermatecas y otros detalles morfológicos. Son descritos dos

nuevos géneros: Aphractia (para Atractia longicornis Her-

mann) y Cyphomyiactia (especie-tipo, costal, Sp. N., de Brasil,

Goiás, Goiánia (Campinas)). Son descritas dos nuevas espe:

cies de Dissmeryngodes: amapa (localidad-tipo: Brasil, Ama-

pá, Serra do Navio) e ¡racema (localidad-tipo: Brasil, Sao

Paulo, Ribeiráo Preto (Fazenda Iracema)). Se proponen las si-

guientes nuevas sinonimias genéricas: de Paratractia Hull,

1962 con Atomosia Macquart, 1838; de Cyphotomyia Willis-

INTRODUCTION

This is part VI of a series of papers intended as a

preliminary effort to define the American genera

of Asilidae, describing the new genera,

preparatory to the elaboration of Catalogue of

Neotropical species, for inclusion in the

forthcoming World Catalog of Flies, now being

prepared by the U.S. Department of Agriculture

and U.S. National Museum of Natural History,

Washington, D.C.

We have adopted a classification of the

Asilidae in 8 subfamilies. It follows, basically, the

classification adapted by Papavero (1973), with

the elevation of the Stichopogoninae to

subfamily rank, and the Apocleinae Papavero

are included within the Asilinae. The

Leptogastrinae are considered a subfamily of

Asilidae. Morphology and terminology we have

followed J.F. McAlpine, 1981.

LisT OF ABBREVIATIONS

AMNH : American Museum of Natural History,

New York

BMNH : British Museum (Natural History), Lon-

don

BUD : Magyar Termésettudományi Múzeum,

Budapest

CRAC : University of Cracovia, Poland

FAUCV : Facultad de Agronomía, Universidad

Central de Venezuela, Maracay

FRAN : Natur-Museum und Forschungs- Institut

(Senckenberg), Frankfurt a. M.

MCZ : Museum of Comparative Zoology, Har-

vard University, Cambridge, Mass.

ton, 1889 y Protichisma Hermann, 1912 con Cerotainia Schi

ner, 1866; de Centrolaphria Enderlein, 1914 y Catonomyia

Hull, 1962 con Dissmeryngodes Hermann, 1912; de Josma-

yala Kaletta, 1978 con Eumecosoma Schiner, 1866; de Otho-

niomyia Hermann, 1912, Sphagolestes Hull, 1962, Volupta-

rius Kaletta, 1978 e lucundus Kaletta, 1978 con Oidardis

Hermann, 1912. Rhatimomyia Lynch Arribálzaga, 1882 no

puede ser reconocido. Se agrega un catálogo de las especies

neotropicales, con muchas nuevas combinaciones.

PALABRAS CLAVES: Insecta. Taxonomía. América. Claves.

Asilidae. Atomosiini. Espermateca. Morfología.

MIL : Museo Civico di Storia Naturale, Milan

MNHNP : Muséum National d'Histoire Naturelle,

Paris

MUN : Zoologische Sammlungen des Baye-

rischen Staates, Munich

MZUSP - Museu de Zoologia, Universidade de Sáo

Paulo, Sao Paulo

NAPLES : Naples Museum, Italy

OXF : Hope Department of Entomology, Ox-

ford University, Oxford

PHIL : Academy of Natural Sciences, Phila-

delphia

SANT «Museo Nacional de Historia Natural,

Santiago

sr : Syntypes

STOCKHOLM - : Naturhistoriska Riksmuseet,Stockholm

TORO «Istituto e Museo di Zoologia, Universitá

di Torino, Turin

TB : Typels)

UCV - Universidad Central de Venezuela, Cara-

cas

USNM - United States National Museum of Natu-

ral History, Washington, D.C.

WASH - Washington State University, Pullman

WIEN - Naturhistorisches Museum, Vienna

The material used in this series belongs to

the Museu de Zoología da Universidade de Sáo

Paulo, Brasil and to the Departamento de

Zoología, Universidad de Concepción, Chile

(MZUOC).

The methodology employed

dissection and presentation of the male

terminalia, female spermathecae and other

morphological details is the same employed by

Artigas (1971).

in the

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriimae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. ef al.

TRIBE ATOMOSIINI Hermann

KEY TO THE AMERICAN GENERA

1. Anatergite with soft or coarse hairs, but never with spine-or spike-

Med AAA A E A ARCA

2(1). Antenna with two flagellomeres (Fig. 2). Face extremely narrow; two very long and

stout ocellar bristles (Fig. 1). At least 4 pairs of stout, stiff bristles on upper occiput.

Mesonotum slightly bare, shining, with 1 notopleural, 1 supraalar and 1 postalar

bristles, all long and stout. Scutellum with a pair of exceptionally long and stout

marginal bristles. Abdomen parallel-sided, with fine and scattered punctures; lateral

bristles present on tergites 1-6 or 1-3. Hind femur with (Fig. 3) or without

moderately long, tuberculate spines on apical half of ventral surface. Male

terminalia and aedeagus as in Figs. 4-8 and 11-15. Female spermathecae as in Figs.

AI andil 6 ATASCADA e oaaoaces

a Ri Is ais Dissmeryngodes Hermann, 1912.

Antenna with a single flagellomere. Other combinations Of Characters ...oooononccinnnncncmnm..

3(2). Lateral bristles present on all tergites. Large (10-12 mm), robust flies. Face

entirely convex, no projection at the subcranial margin, the coarse bristles of the

mystax covering entire length of face. Abdomen, in dorsal view, with 6 tergites.

ETONSIMINCON EA

Lateral bristles restricted to tergites 1-3 or only to tergite 1. Other combinations

MAA A Ia

4(3). ¡Scape twice as long as pedicel. Flagellomere three times length of scape and

pedicel together, truncate at apex, with a dorsally placed spine. Body black. Male

terminalia as in Figs. 18-22. Female spermathecae as in Figs. 23-24 (Mexico to

A Aphestia Schiner, 1866.

Scape subequal in length to pedicel. Flagellomere of variable length, but

apex prolonged into a filiform process and spine subapically placed. Ground color of

abdomen yellowish-brown, with or without dark spots and stripes (Peru, Brazil:

BAM OS Aphractia, gen. n.

EA A a

BLONDIE CONN LEE IA A A A A

6(5). Vein M> absent beyond cell d (i. e., only four posterior cells present). (USA,

MA A A nao Atomosiella Wilcox, 1937.

T(6). Face and antenna with long and thick pile. Also the occiput very thickly pilose.

Mesonotum entirely covered with semierect, thick pile. Tarsal claws thick at base

and empodial bristle developed, almost claw-like. Male terminalia as in Artigas

(1971: fig. 69). Female spermathecae as in Artigas (1971: fig. 70) and our Figs. 25-26

Cm a AA Lamprozona Loew, 1851.

Hairs of head and thorax relatively scarce. Tarsal claws and empodial

Dustin dd

Gayana Zool. 55(1), 1991

8(7). Eye, in lateral view, narrower on lower half, due to a recession of its postero-inferior

margin. Face slightly prominent at subcranial margin. Scutellum with smooth or

impressed rim, and with two long marginal bristles, or two long and two short

marginal bristles, or yet with several long and short marginal bristles intermingled.

Male terminalia and aedeagus as in Figs. 27-31. Female spermathecae as in Figs. 32-

33 (North and South America, but not in Chile) ............ Eumecosoma Schiner, 1866.

Eye, in lateral view, as wide above as below (i.e., eye almost symmetrical in relation to its

equator). Face prominent or not at subcranial margin. Scutellum with short or long

marginal hairs, but never with differentiated long bristles. Male terminalia and

aedeagus as in Figs. 34-38. Female spermathecae as in Figs. 39-47 (Neotropical, but

NAAA A art Oidardis Hermann, 1912.

9(5). Minute (5 mm) flies, with globose head. Face not visible in lateral aspect.

Mystax composed of about 6 bristles restricted to subcranial margin of face. Thorax

and abdomen micropilose. Mesonotum with a few lateral bristles. Scutellum short

pilose, with 2 marginal bristles (Peru) ......................... Strombocodia Hermann, 1912.

Larger flies. Head never globose. Other Combinations Of CharactelS c.uncccccicnnininnnmmmmms.

10(9). Face relatively wide and evenly convex. Flagellum prolonged into a filiform

process. Abdomen very wide and short, cup-shaped. Body with blue reflections.

Cyphomyia (Stratiomyidae) like flies (Brazil: Goiás) .............. Cyphomyiactia, gen. n.

Face flat above, prominent below. Abdomen never as aboOVe ...ooonccconocccononnconconcnncinnonocnncnnos

11(10). Antennal flagellomere with acute apex, sometimes prolonged into a more or

less filiform process and with a subapically or dorsally placed spine (if dorsal, spine

always placed distally to middle of flagellum). Male terminalia and aedeagus as in

Figs. 48-52. Female spermathecae as in Figs. 53-56 (Central and South America, but

NAC A A Hybozelodes Hermann, 1912.

Antennal flagellomere truncate at apex and spine always placed dorsally and

always situated before middle of flagellum. Male terminalia and aedeagus as in Figs.

57-61. Female spermathecae as in Figs. 62-65 (Brazil: Amazonia and southern

Sd A A A A Lycosimyia Hull, 1958.

IZAN MAMI a can

'AMtEnn a Witness entes

13(12).Scape and pedicel subequal in length. Frons with divergent slopes. Male

terminalia and aedeagus as in Figs. 66-70. Female spermathecae as in Figs. 71-72

(MexicojtossouthenBraz es toa: Atoniomyia Hermann, 1912.

Scape about three times as long as pedicel. Frons with (?) convergent slopes

(Panama ene Bathropsis Hermann, 1912.*

14(12). Frons relatively narrow, with convergent slopes. Scape never several times

NE A o oca

Frons extremely widened, with slopes definitely divergent (Fig. 89). Scape

several times longer than pedicel (Fig. 90). Male terminalia and aedeagus as in Figs.

*Not seen.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. ef al.

91-95, 98-102. Female spermathecae as in Figs. 96-97, 103-104 (North and South

AMECA O O EO a: Cerotainia Schiner, 1866

15(14). Flagellum with acute apex prolonged into a filiform process, and spine

subapically placed (Southern Brazil)

A A: Atractia Macquart, 1838

Flagellum truncate at apex, with spine definitely dorsal in position

16(15). Frons extremely shallow. Pleura, mesonotum and abdomen very coarsely punctate.

Scutellum with only a pair of fine, stiff, marginal hairs. Lateral bristles confined to

first two tergites and replaced by spiky pile on tergites 3-6. Apex of abdomen

strongly cupped. Pronotum with a collar of spikelike bristles. Occipital bristles very

weak. Female spermathecae as in Figs. 73-74 (Brazil: Distrito Federal).

Frons deeply excavated. Body punctures variable.

Hodites Hull. 1962

Scutellum with several

marginal hairs, or with 2 to 6 or more spike-like bristles. Lateral bristles variable:

from confined to tergite 1 to present on all tergites. Pronotum with or without long

spike-like bristles. Occipital bristles variable. Male terminalia and aedeagus as in

Figs. 75-79 and 82-86. Female spermathecae as in Figs. 80-81 and 87-88 (Americas,

but not in Chile)

Genus Aphestia Schiner

Aphestia Schiner, 1866:663 (key), 673. Type-

species, brasiliensis Schiner (orig. des.)

= annulipes (Macquart).

Aphestia annulipes (Macquart)

Atomosia annulipes Macquart, 1838:74

(1839:190). Type-locality: “Brazil”. TP

MNHNP.

Atomosia affinis Macquart, 1850:379 (1850:75).

Type-locality: “Brazil”. TP. MNHNP.

N. SYN.

Aphestia brasiliensis Schiner, 1866:378. Type-

locality: “Brasil”. TP WIEN.

Aphestia calceata Schiner, 1867:379. Type-

locality: “Brazil”. TP WIEN. Ref.- Her-

mann, 1912:123 (Synonymy).

Aphestia calcarata Williston, 1901:317, error.

There exists a considerable variation in the

color of legs and in the shape of cell rs (from wi-

dely open to closed and petiolate). We interpret

this species as containing those representatives of

Aphestia with mixed black and white bristles in

the mystax.

A E IA ETE ER .Atomosia Macquart, 1838.

MATERIAL EXAMINED

BRAZIL. RONDONIA: Pimenta Bueno, xi. 1960 (Alvarenga). 18

. AMAPÁ Mazagáo. Jaú ao Vila Nova, 1958 (Damasceno). 1

Q . MaTO Grosso: Utiariti, Rio Papagaio, xi.1966 (Lenko «

Pereira). 19 . MINAS GERAIS: Macaúba, no date (Pereira), 1 2

: Pouso Alegre, xi1.1952 (Pereira), 1 Y . GolAs: Goiánia

(Campinas). 1.1936 (Spitz), 1 4 . RIODE JANEIRO: Muri, Nova

Friburgo, 1.1966 (Guimaraes). 28, 2 % (one with spermathe-

cae preserved on vial on same pin); Itatiaia, 700 m, 1.1955

(Zikán). 1 8 ; Magé, ¡1.1940 (Shannon), 1 2 . Sño PauLo

Aragatuba, Rio Jacaretinga. x.1961 (Lane £ Rabello), 1 9 ;

Praia Grande, Ilha de Santo Amaro, xi.1969 (Val), 1.2;

Praia Grande (Fazenda Rondónia), 11.1945 (Carrera), 38, Ju-

quiá, no date (Lane). 1 4 ; Alto da Serra, xi1.1925, xii.1927

(Spitz). 2 4 ; Rio Claro, xii.1930 (Borgmeier). 1 2 ; Sáo Paulo

(Cantareira. Chapadáo). x1.1946 (Barretto). 3% ; do., xi.1951

(Carrera £« d'Andretta), 1 Y ; Sáo Paulo (Horto Florestal).

xi.1946 (Carrera). 1 ; Sáo Paulo (Ipiranga). ¡ii.1948 (Ra

bello), 12 ; do.. 111.1934 (Spitz). 18: do.. 1.1948 (Dente). 1d

(terminalia in vial on same pin); Sáo Paulo. v. 1923, 1v.1926

(Barbiellini), 38 .2d8. PARANA: Curitiba, x.1936, 1.1940 (Cla-

retiano). 28, 19 ; Rio Negro, vii.1929, co collector, 1 4 .

SANTA CATARINA: Blumenau, 1.1964 (Carrera). 12 ; Nova

Teutónia, 111954 (Plaumann), 1 8 . All in MZUSP.

Aphestia nigra Bigot

Aphestia nigra Bigot, 1878:225. Type-locality:

“Mexico”. TP OXF.

Gayana Zool. $5(1), 1991

Aphestia mexicana Williston, 1901:317, pl. 6,

fig. 2. Type-locality: Mexico, Guerrero:

Amula; Veracruz: Atoyac. ST BMNH.

N. SYN.

Atomosia andrenoides Bromley, 1934:339. Type-

locality: Guyana, Bartica, Kartabo. TP

AMNH. N. SYN,.

As occurs with 4. annulipes, there is a great

variation in the color of legs and the shape of cell

rs. We are considering as this species specimens

with entirely white mystax.

MATERIAL EXAMINED

BRAZIL. AMAZONAS: Manaus, xi.1957 (Elias £« Ropa), 1 2 .

DISTRITO FEDERAL: Corumbá (Fazenda Monjolinho), 11.1945

(Barretto), 11 specimens. GOIÁS: Goiánia (Campinas),

xii.1935 (Spitz), 10. RIO DE JANEIRO: Itatiaia, 700 m, 111948,

111950 (Zikán), 2 4 . Sao PauLo: Nova Europa (Fazenda Ita-

queré), v.1964 (Lenko). 1 2 ; Barueri, 1¡.1955 (Lenko), 19 ;

Sáo Paulo (Cantareira, Chapadao), x1.1946 (Barretto), 19.

PARANA: Matinhos, 11.1945, no collector, 1d.

ARGENTINA. CÓRDOBA: Depto. S. Martín, 1.1950, no

collector, 1d.

All in MZUSP.

Aphractia, gen. n.

Very similar to Aphestia, differing however in

the following characters: scape subequal in

length to pedicel; flagellomere of variable length,

but apex prolonged into a filiform process and

spine subapically placed; abdomen more or less

parallel-sided, more slender than in Aphestia, and

yellowish-brown in ground color, with or

without dark spots and stripes. Wings with cell rs

open (in the very few specimens examined; there

may be a strong variation, as in Aphestia).

Type-species: Atractia longicornis

mann.

Her-

LIST OF SPECIES

longicornis (Hermann), 1912:190, fig. 74 (Atrac-

tia). Type-locality: Brazil, Bahia. TP? N.

COMB.

rubida (Hermann), 1912:179 (Atractia).Type-

locality: Brazil, Rio Grande do Sul. TP

WIEN. N. COMB.

vivax (Hermann), 1912:177, fig. 67 (Atractia).

Type-locality: Peru, Umuhuankiali.

Urubamba R., 500 m, and “Peru”. ST ?

N. COMB.

Genus Atomosia Macquart

Atomosia Macquart, 1838:73 (1839:189). Type-

species, incisuralis Macquart (Coquillett,

1910:512) = puella (Wiedemann).

Paratractia Hull, 1962:384. Type-species,

Laphria dasypus Wiedemann (orig.

des.). N. SYN.

anonyma Williston, 1901:316. Type-locality:

Mexico, Guerrero, Chilpancingo. TP

AMNH, BMNH.

argyrophora Schiner, 1868:169. Type-locality:

“Brazil”. TP WIEN.

armata Hermann, 1912:152, fig. 58. Type-

locality: “Brazil”. TP MUN, MIL.

barbiellinii Curran, 1935:7. Type-locality: Brazil,

Sao Paulo. TP AMNH.

beckeri Jaennicke, 1867:359. Type-locality: “Me-

xico”. TP MUN.

bequaerti Bromley, 1934:339. Type-locality: Bra-

zil, Pará, Santarém. TP USNM.

bigoti Bellardi, 1861:120 (20). Type-locality:

“Mexico”. TP TORO.

cerverai Bromley, 1929:282, fig. 8. Type-locality:

Cuba, Soledad. TP USNM.

coxalis Curran, 1930:18. Type-locality: Brazil,

Mato Grosso, Corumbá. TP AMNH.

cyanescens Rondani, 1848:92. Type-locality:

“Brazil”. TP NAPLES.

danforthi Curran, 1935:8. Type-locality: Puerto

Rico, Coamo Springs. TP AMNH.

dasypus (Wiedemann), 1828:527 (misprinted as

257) (Laphria). Type-locality: “Brazil”.

TP ? N. COMB.

fredericoi Carrera, 1952:209. Type-locality: Bra-

zil, Sáo Paulo, Sáo Paulo (Ipiranga). TP

MZUSP.

frontalis Curran, 1930:17. Type-locality: Brazil,

Mato Grosso, Chapada dos Guimaraes.

TP AMNH.

geniculata (Wiedemann), 1821:241 (Laphria).

Type-locality: “Brazil”. TP 2WIÉN.

hondurana James, 1953:53. Type-locality: Hon-

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomostini: ARTIGAS, J.N. et al.

duras, Zamorano, Escuela Agrícola Pa-

namericana. TP MICH.

limbiventris Thomson, 1869:466. Type-locality:

Uruguay, Montevideo. 1

STOCKHOLM.

limbativentris Lynch Arribálzaga, 1880:50,

emend.

lineata Curran, 1930:19. Type-locality: Brazil,

Mato Grosso do Sul, Corumbá. TP

AMNH.

macquarti Bellardi, 1861:120 (20). Type-locality:

“Mexico”. TP TORO.

maestrae Bromley, 1929:287, fig. 7. Type-

locality: Cuba, Sierra Maestra. TP

USNM.

melanopogon Hermann, 1912:144, fig. 53. Type-

locality: USA, Texas. Distr.- USA, Me-

xico, Honduras. TP 2?WIEN.

metallescens Hermann, 1912:150, fig. 57. Type-

locality: Argentina, Mendoza. TP

MUN, WIEN.

metallica Bromley, 1929:283. Type-locality: Cu-

ba, Sierra Maestra, Palma Mocha. TP

USNM.

mucida Osten Sacken, 1887:184. Type-locality:

Mexico, Sinaloa, Presidio. TP BMNH.

nigroaenea Walker, 1851:154. Type-locality: Co-

lombia, Bogotá (in label of type). TP

BMNH.

nuda Hermann, 1912:147, fig. 55. Type-locality:

Trinidad, Belmont (in label of type). TP

MUN.

panamensis Curran, 1930:17. Type-locality: Pa-

nama, Canal Zone, Barro Colorado 1.

TP AMNH.

pilipes Yhomson, 1869:465. Type-locality: Ar-

Egentima, —IBUemOs —¿MreS. 108

STOCKHOLM.

pilosipes Lynch Arribálzaga,

emend.

pubescens Bromley, 1929:281, pl. 1, fig. 3. Type-

locality: Cuba, Soledad. TP MCZ.

puella (Wiedemann), 1828:531 (Laphria). Type-

locality: unknown. TP WIEN.

incisuralis Macquart, 1838:76 (1839:192), pl.

7, fig. 1. Type-locality: “Cuba”. TP

MNHNP.

rica Curran, 1935:9. Type-locality: Puerto Rico,

Mayaguez. TP AMNH.

rosalesi Carrera £ Machado-Allison, 1963:242,

fig. 1. Type-locality: Venezuela, Carabo-

1880:52,

bo, Maruiara. TP UCV.

rufipes Macquart, 1847:55 (1847:39). Type-

locality: USA, Pennsylvania. Distr.-

USA, Mexico. TP MNHNP.

eupoda Bigot, 1878:234 (Cormansis). Type-

locality: “Mexico”. TP OXF.

soror Bigot, 1878:236. Type-locality: “Mexi-

co. TPLOXE:

punctifera Hermann, 1921:161 (as rufipes

var.). Type-locality: “Mexico”. TP

MUN.

?scoriacea (Wiedemann), 1828:529 (Laphria).

Type-locality: “Brazil”. TP?

selene Curran, 1935:7. Type-locality: Brazil, Sáo

Paulo. TP AMNH.

setosa Hermann, 1912:145, fig. 54. Type-

locality: “Brazil”. TP MIL, MUN.

tenuis Curran, 1930:19. Type-locality: Brazil,

Mato Grosso, Chapada dos Guimaraes.

TP AMNH.

tibialis Macquart, 1846:204 (1846:76). Type-

locality: Mexico, Yucatán, Mérida. TP

Most.

unicolor Macquart, 1838:74 (1839:190), pl. 7,

figs. 2-3. Type-locality: Brazil, Rio Gran-

de do Sul. TP MNHNP.

venustula Lynch Arribálzaga, 1880:50. Type-

locality: Argentina, Buenos Aires, Las

Conchas and Gran Chaco. TP lost.

xanthopus (Wiedemann), 1828:529 (Laphria).

Type-locality: “Brazil”. TP?

Genus Atomosiella Wilcox

Atomosiella Wilcox, 1937:40. Type-species,

Atomosia antennata Banks (orig. des.).

antennata (Banks), 1920:66 (4tomosia). Type-

locality: USA, Arizona. Distr.- USA,

Mexico (Baja California). TP ?MCZ.

Genus Atoniomyia Hermann

Atonia Williston, 1889:257 (preocc. Gistel,

1848). Type-species, Atomosia mikii

Williston (Williston, 1901:316).

Atoniomyia Hermann, 1912:81 (nom. nov. for

Atonia Williston). Type-species,

Atomosia mikii Williston (aut.).

Neatonia Bromley, 1935:130. Unavailable name

Gayana Zool. 55(1), 1991

(no type-species designated).

albifacies (Hermann), 1912:85 (key), 97 (descrip-

tion, as albiceps (sic), fig. 38 (Atonia).

Type-locality: Brazil, Mato Grosso,

Cuiabá. TP BUD.

ancylocera (Schiner),1868:170 (Atomosia). Type-

locality: “Venezuela”. TP WIEN.

brevistylata (Williston), 1901:316, pl. 6, fig 1

(Atonia). Type-locality: Mexico, Tabas-

co, Teapa. TP BMNH.

fulvipes Carrera, 1946:122, figs. 7, 10, 20. Type-

locality: Brazil, Mato Grosso do Sul, Sa-

lobra. TP MZUSP.

grossa Carrera, 1946:125, figs. 9, 3, 12. Type-

locality: Brazil, Sáo Paulo, Severínia. TP

MZUSP.

hispidella (Hermann), 1912:95, fig. 37 (Atonia).

Type-locality: Brazil, Sáo Paulo. TP

MIL, MUN.

laterepunctata (Hermann), 1912:93, fig. 36 (Ato-

nia). Type-locality: Peru, mouth of

Pachitea River, Umuhuankiali at R.

Urubamba and Puerto Yessup; Bolivia,

Mapiri, Sarampiuní; Peru, Vilcanota.

ST WIEN, MIL, BUD, BMNH.

mikii (Williston), 1886:290 (Atomosia). Type-

locality: “San Domingo”. TP ?lost.

mollis (Hermann), 1912:88, fig. 33 (4tonia).

Type- locality: Peru, Unini at Ucayali R.

and Vilcanota. ST BUD, MUN.

pinguis (Hermann), 1912:90, fig. 34 (Atonia).

Type-locality: Peru, mouth of Pachitea

R. TP MUN.

scalarata (Hermann), 1912:92, fig. 35 (4tonia).

Type-locality: Peru, Rosalina at Uru-

bamba R.; Bolivia, Mapiri, Chimate. ST

WIEN, MUN, BMNH.

setigera (Hermann), 1912:86, pl. 3, figs. 24-25

(Atonia). Type-locality: “Brazil”. TP

WIEN.

viduata (Wiedemann), 1819:50 (Laphria). Type-

locality: “Brazil”. TP WIEN.

Genus Atractia Macquart

Atractia Macquart, 1838:151 (1839:267). Type-

species, Asilus psilogaster Wiedemann

(mon.).

Most of the species included here are now

transferred to the genera Hybozelodes, Lycosim-

yia and Aphractia. Only two species remain in

Atractia:

psilogaster (Wiedemann), 1828:456 (4Asilus).

Type-locality: “Brazil”. TP WIEN.

coronata Schiner, 1867:412. Type-locality:

“Brazil”. TP WIEN.

pulverulenta Schiner, 1867:412. Type-locality:

“Brazil”. TP WIEN.

Genus Bathropsis Hermann

Bathropsis Hermann, 1912:68. Type-species, pe-

ruviana Hermann (orig. des.).

basalis Curran, 1930:6, fig. 1. Type-locality: Pa-

nama, Canal Zone, Barro Colorado 1.

TP AMNH.

delgadoi Kaletta, 1978:56. Type-locality: Vene-

zuela, Aragua, Hacienda El Periquito,

Ocumare de la Costa. Type, FAUCV.

peruviana Hermann, 1912:69, fig. 23, pl. 2, figs.

13-14. Type-locality: Peru, Vilcanota.

TP MUN.

Genus Cerotainia Schiner

Cerotainia Schiner, 1866:662 (key), 673

(1868:170, second erection of genus).

Type-species, Laphria xanthoptera

Wiedemann (orig. des.).

Ceratotaenia Lynch Arribálzaga,

emend.

Cyphotomyia Williston, 1889:257. Type-species,

lynchii Williston (orig. des.). N. SYN.

Protichisma Hermann, 1912:35. Type-species,

longimanus Hermann (orig. des.). N.

SYN.

1880:52,

albibarbis (Curran), 1930:7 (Protichisma). Type-

locality: Panama, Canal Zone, France

Field. TP AMNH. N. COMB.

argyropasta Hermann, 1912:61. Type-locality:

Peru, Ucayali R. TP?

argyropus Schiner, 1868:170. Type-locality: “Co-

lombia” (in error; actually Venezuela in

type label). TP WIEN.

argyropyga Hermann, 1912:52, fig. 16. Type-

locality: “Peru”. TP MUN.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. et al.

aurata Schiner, 1868:171. Type-locality: “Colom-

bia”. TP WIEN.

bella Schiner, 1867:380. Type-locality: “Brazil”

(probably Rio de Janeiro State, as it was

collected by Bescke). TP WIEN.

brasiliensis Schiner, 1867:379. Type-locality:

“Brazil” (As the preceding species, this

one was also collected by Bescke, accor-

ding to the label of the type). TP WIEN.

camposi Curran, 1934:3. Type-locality: Ecuador,

Posorja. TP AMNH.

dasythrix Hermann, 1912:48, fig. 13. Type-

locality: Peru, mouth of Pachitea R.;

Bolivia, Mapiri, Sarampiuní, 700 m. ST

MUN.

debilis Hermann, 1912:59, fig. 21. Type-locality:

Peru, mouth of Pachitea R., 150 m;

Chanchamayo, 800 m; Bolivia, Saram-

piuní; Peru, Vilcanota. ST MUN

WIEN, BMNH.

dubia Bigot, 1878:238. Type-locality: “Mexico”.

TP OXF.

feminea Curran, 1930:14. Type-locality: Pana-

ma, Canal Zone, Corozal. TP AMNH.

flavipes Hermann, 1912: 57, fig. 20. Type-

locality: Peru, Chanchamayo, 800 m;

Paraguay, Asunción. ST MUN, BUD.

jamaicensis Johnson, 1919:430 (as macrocera

var.). Type-locality: “Jamaica”. TP

MCZ.

laticeps Bromley, 1929:279, pl. 1, fig. 2.

Type-locality: Cuba, Zapata, Santo To-

más. TP USNM. N. SYN.

leonina Hermann, 1912:49, fig 14. Type-locality:

Argentina, Mendoza. TP MUN.

longimana (Hermann), 1912:37, pl. 1, figs. 7-8

(Protichisma). Type-locality: Peru,

Callanga. TP BUD. N. COMB.

lynchii (Williston) 1889:258 (Cyphotomyia).

Type-locality: Brazil, Mato Grosso,

Chapada dos Guimaraes. Distr.- Brazil

(Mato Grosso, Sao Paulo), Peru, Bolivia.

TP ?2AMNH. N. COMB.

marginata Hermann, 1912:62. Type-locality: Pe-

ru, Pachitea R. TP?

minima Curran, 1930:12. Type-locality: Panama,

Canal Zone, Barro Colorado I. TP

AMNH.

nigra Bigot, 1878:238. Type-locality: “Mexico”.

TP-OXE:

nigripennis (Bellardi), 1861:119 (19) (Atomosia).

Type-locality: “Mexico”. TP TORO.

ornatipes James, 1953:54. Type-locality: Hondu-

ras, Zamorano. TP WASH.

propingua Schiner, 1868:171. Type-locality: “Co-

lombia” (in error; actually Venezuela in

type's label). TP WIEN.

rhopalocera Lynch Arribálzaga, 1882:189 (as

Ceratotaenia). Type-locality: Argentina,

Buenos Aires, Chacabuco. TP lost.

unicolor Hermann, 1912:64, fig. 22. Type-

locality: “Peru”. TP MUN.

violaceithorax Lynch Arribálzaga, 1880:52 (as

Ceratotaenia). Type-locality: Argentina,

Buenos Aires. TP lost.

willistoni Curran, 1930:14. Type-locality: Brazil,

Mato Grosso, Chapada dos Guimar2es.

TP AMNH.

xanthoptera (Wiedemann), 1828:530 (Laphria).

Type-locality: unknown (“America” on

type label). TP WIEN.

Genus Cyphomyiactia, gen. n.

This beautiful fly, with bluish reflections on the

body, somewhat resembles the stratiomyid genus

Cyphomyia.

Head wider than high. Face relatively wide,

nearly 3/5 maximum width of an eye, evenly

convex, densely tomentose; bristles of mystax

covering entire face, longer on ventral half.

Proboscis relatively short, robust, subcylindrical,

obliquely directed downwards, reaching apex of

bristles of mystax. Palpus short, with several

apical bristles. Antenna attached above middle of

head, long and slender; scape about 1.5 times

length of pedicel, with 2 bristles on ventral

surface; pedicel with 1 more or less short bristle

dorsally; flagellum elongate, thickened, a little

compressed laterally, strongly acuminate at apex,

over 3 times the combined length of scape and

pedicel, prolonged into a filiform process; a

definite spine dorsally placed on the second third

of the flagellum. Frons short, as wide as face,

with convergent slopes; 3 more or less strong

orbital bristles. Ocellar tubercle with 2 divergent

bristles. Occiput tomentose, with strong bristles

above, some weaker ones laterally, and ventrally

with sparse, long, fine pile.

Mesonotum arched, moderately pilose, the

pile semierect. Prothorax with several erect hairs.

Gayana Zool. 55(1), 1991

Proepisternum with several hairs. Postpronotal

lobe (humerus) with semierect pile.

Anepisternum with sparse long hairs and 3 long

and strong bristles. Anatergite with short hairs.

Katatergite with long reclinate bristles. 1

notopleural, 1 supraalar and 1 postalar bristles

present. Posterior callus with 3 bristles.

Scutellum dorsally with fine, recumbent hairs

and several marginal bristles.

Legs: All femora equally swollen; hind tibia

a little swollen on the distal half and slightly

arcuate; all tibiae with long bristles dorsally,

anteriorly and posteriorly and ventrally with a

brush of short pile extending to tarsomeres.

Abdomen characteristically short, broad

and robust, wider than thorax, strongly cupped,

shining blue. First segment slightly wider than

second. The entire abdomen strongly arched and

curved downwards, punctured, with moderate

pile. Tergite 1 with 10-12 strong lateral bristles;

the remaining tergites only with pile laterally.

Type-species, Cyphomyiactia costal, sp. n.

Cyphomyiactia costal, Sp. n.

Face densely silvery-white tomentose. Hairs of

mystax white. Occiput golden tomentose at

margins, brownish-black tomentose around

foramen, with long, sparse, fine white pile

bellow; dorsal occipital bristles yellowish. Scape

brown, pedicel brownish-yellow, flagellum red-

brown and white pollinose. Frons golden

tomentose, with a slender black stripe running

from anterior ocellus to base of antennae. Vertex

black.

Thorax blackish in ground color, with

bluish reflections. Pleura with mixed silvery-

white and golden-brown tomentum in some

KEY TO SPECIES:

areas. Antepronotum predominantly golden

tomentose, with a brownish-black stripe on the

anterior border and yellow hairs. Lateral margins

of antepronotum silvery-white tomentose.

Postpronotum brownish-golden tomentose, hairs

brown. Proepisternum silvery-white tomentose,

as well as the anepisternam, which shows a

polished brown spot and brown hairs.

Anepimeron brown, with white pollinosity.

Anatergite goldish-silvery-white pollinose, with a

fringe of yellowish hairs behind posterior callus.

Meron brown, white pollinose, with a few brown

hairs. Katatergite brown, silvery-white

tomentose, with brown bristles. Posterior callus

brown.

Wings hyaline, sligtly fumose along veins.

Halteres yellow.

Abdomen blackish in ground color, with

blue shine. Hairs of abdomen white. Tergites 3-4

with posterolateral golden and silvery-white

tomentose spots.

Holotype Y, BRAZIL, Goiás: Goiánia

(Campinas), 1935 (Borgmeier € Souza Lopes), in

the MZUSP.

This species is dedicated to Prof. Dr.

Newton C. A. da Costa (Instituto de Estudos

Avangados, Universidade de Sáo Paulo).

Genus Dissmeryngodes Hermann

Dissmeryngodes Hermann, 1912:75. Type-

species, Laphria antica Wi¡edemann

(orig. des.).

Centrolaphria Enderlein, 1914:241. Type-

species, columbiana Enderlein (orig.

des.) = nigripes (Macquart). N. SYN.

Catonomyia Hull, 1962:380. Type-species,

spiculata Hull (orig. des.). N. SYN.

1. Hind femur only with short white hairs on apical half of ventral surface.

Wing hyaline. Legs yellow, except for hind femur and tibia, which are black, with

yellow at base and apex. Tergites 1-6 with lateral bristles (Brazil: southern states)

anticus (Wiedemann)

Hind femur with 4-5 strong, tuberculate, black or white spines on apical half

of ventral surface

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. er al.

2(1). Wing black fumose on apical 2/3 (beyond fork of Ry and m-cu crossvein). Legs

entirely black, except for fore and middle tibiae, which are dirty white. Mystax

white with 2 black bristles intermingled. Tergites 1-6 with lateral bristles. Spines o

hind femur black (Colombia to Brazil: Pará) nigripes (Macquart)

Wing hyaline, with yellowish tinge. Fore and middle femora and tibiae

yellow, hind leg black, except for inmediate base of femur and immediate base and

apex of tibia, which are also yellow. Mystax entirely white. Only tergites 1-3 with

lateral bristles. Spines of hind femur translucent yellowish-white

3(2).

Second flagellomere entirely black. Hairs of anatergite white.

Paulo)

Dissmeryngodes amapa, Sp. n.,

Body length, 7 mm.

Face black, silvery-white micropubescent.

Mystax bristles entirely white. Frons silvery-

white micropubescent. Occiput black around

foramen, mixed brown and silvery-white

micropubescent at margins, with white pile

below; occipital dorsal bristles black. Proboscis

and antennae black, second flagellomere whitish

on apical 2/3.

Thorax black. Postpronotum and

proepisternum with white micropubescence and

a few scattered pale hairs. Anepisternum shining

brown, white micropubescent, with a strong

black bristle on anepisternal suture.

Katepisternum entirely white micropubescent.

Anepisternam shining brown, slightly

micropubescent. Katatergite with long brown

bristly hairs. Anatergite brown with a fringe of

short black hairs. Halteres yellow.

Legs: Fore and middle femora and tibiae

yellow. Hind leg black, except for immediate

base of femur and immediate base and apex of

tibia, which are yellow. Coxae yellow-white

micropubescent; middle coxa with fine white

pile. Fore and middle femora with yellow hairs.

Hind femur with 5 translucent yellow, short,

tuberculate spines. Fore and middle tibiae with

black bristles. All tarsomeres predominantly

yellowish-brown, with 2-4 long black bristles

anterodorsally and black ones posterolaterally.

Wing hyaline, slightly yellowish.

Abdomen black, with black pile.

Second flagellomere whitish on apical 2/3. Hairs of anatergite black. (Brazil: Amapá)

amapa, Sp. n.

(Brazil: Sáo

A iracema, sp. n.

Holotype y, BRAZIL, Amapá: Serra do

Navio, x. 1957 (J. Lane), in the MZUSP.

Dissmeryngodes anticus (Wiedemann)

Laphria antica Wiedemann, 1828:530. Type-

locality: “Brazil”. Distr.- Southern Brazil.

TP FRAN.

MATERIAL EXAMINED

BRAZIL. Sao PAuLo: Boracéia, ¡1.1949 (Carrera), 1d (termi-

nalia in vial on same pin); Tamoio, xii.1944 (Barrett), 19 ;

Ilha Bela, ¡1.1953 (Rabello), 1 2 . RIO DE JANEIRO: Itaguaí,

Serra da Caveira, 600 m, ii.1948 (Zikán), 13, 24 ; Rio de Ja-

neiro, vii. 1940 (Servigo de Febre Amarela), 2 9 (1 with sper-

mathecae in vial on same pin); do. (Grajaú), 1v.1936, xi.1938

(H. S. Lopes), 39 . All in MZUSP.

Dissmeryngodes iracema, Sp. n.

Very similar to D. amapa, sp. n., differing by the

entirely black second flagellomere and by having

the hairs of the anatergite entirely white.

Holotype Y , BRAZIL, Sáo Paulo: Ribeiráo

Preto (Fazenda Iracema), xii. 1953 (M. P. Barret-

to).

Paratypes: 1 9 , same data of holotype; 1 9

from Brazil, Sao Paulo: Vera Cruz (Fazenda Boa

Esperanga), 1940 (no collector).

All in MZUSP.

Gayana Zool. 55(1), 1991

Dissmeryngodes nigripes (Macquart), n. comb.

Atomosia nigripes Macquart, 1838:74

(1839:190). Type-locality: “Brazil”.

Distr.- Brazil (Pará). TP MNHNP.

Atomosia dispar Walker, 1855:570. Type-

locality: Brazil, Pará, Santarém. TP,

BMNH. N. SYN,.

Centrolaphria columbiana Enderlein, 1914:242.

Type-locality: Colombia, Hacienda

Pehlke. TP CRAC. N. SYN.

MATERIAL EXAMINED

BRAZIL. PARA: Gurupá, x1i.1948 (N. Cerqueira), 19"; Santa-

rém (Fazenda Taperinha), ii.1968 (N. Papavero), 39, 2 2

All in MZUSP.

Dissmeryngodes spiculatus (Hull), n. comb.

Catonomyia spiculata Hull, 1962:381, fig. 660.

Type-locality: Brazil, Rio de Janeiro,

Rio de Janeiro. TP ? lost.

This is undoubtedly a Dissmeryngodes, the

species, however, is unrecognized, as Hull made

a tremendous confusion of this species with

Lycosimyia, and never returned the types to the

MZUSP. Until the types are eventually

recovered, this species must remain

“inquirenda”.

Genus Eumecosoma Schiner

Eumecosoma Schiner, 1866:662 (key), 673

(1868:171, second erection of genus).

Type-species, Laphria pleuritica

Wiedemann (orig. des.).

Josmayala Kaletta, 1978:58. Type-species,

tiarensis Kaletta (orig. des.). N. SYN.

ayala Kaletta, 1974:101. Type-locality:

Venezuela, Aragua, Tiara, Campament

Rangel. TP FAUCV.

calverti Hine, 1917:206. Type-locality: Costa

Rica, Juan Viñas. TP PHIL.

carmina Kaletta, 1974:103. Type-locality:

Venezuela, Aragua, Rancho Grande.

TP FAUCV:

dicromum Bigot, 1878:236. Type-locality:

“Brazil”. TP OXF.

hirsutum Hermann, 1912:73, fig. 27. Type-

locality: Bolivia, Mapiri, Sarampiuní,

700 m; “Peru”. ST MUN.

metallescens Schiner, 1868:171. Type-locality:

“Venezuela”. ST WIEN.

molle Bromley, 1934:340. Type-locality:

Guyana, Bartica. TP AMNH.

pleuriticum (Wiedemann), 1828:527 (misprinted

as 257) (Laphria). Type-locality:

“Brazil”. ST WIEN.

shropshirei Curran, 1930:8, fig. 2. Type-locality:

Panama, Canal Zone, Barro Colorado 1.

TP AMNH.

staurophorum Schiner, 1868: 172. Type-locality:

“Venezuela”. TP WIEN.

tarsale Curran, 1930:11. Type-locality: Panama,

Canal Zone, Barro Colorado 1. TP

AMNH.

tiarense (Kaletta), 1978:60, pl. 2, figs. 1-4

(Josmayala). Type-locality: Venezuela,

Aragua, Tiara, Campamento Rangel.

TP FAUCV. N. COMB.

Genus Hodites Hull

Hodites Hull, 1962:375. Type-species,

punctissima Hull (orig. des.).

punctissima Hull, 1962:376, figs. 286, 692, 1273,

1282. Type-locality: Brazil, Distrito

Federal, Corumbá de Goiás (Fazenda

Monjolinho). TP MZUSP.

Genus Hybozelodes Hermann

Hybozelodes Hermann, 1912:197. Type-species,

nigellus Hermann (orig. des.).

Lophoceraea Hermann, 1912:193. Type-species,

pennata Hermann (orig. des.). N. SYN.

Atractia Macquart of Hermann, 1912:168 (part;

misident.).

acuticornis Carrera, 1945:171. Type-locality:

Brazil, Rio de Janeiro, Mangaratiba. TP

MZUSP.

albipes Hermann, 1912:201. Type-locality: Peru,

Meshagua, Urubamba R. TP?

clausicella (Carrera), 1960:150, figs. 3-4

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. et al.

(Atractia). Type-locality: Brazil, Sao

Paulo, Cajuru. TP MZUSP. N. COMB.

comatus (Hermann), 1912:183, fig. 69 (Atractia).

Type-locality: “Costa Rica”. ST MUN.

N. COMB.

conjungens (Hermann), 1912:189, fig. 72

(Atractia). Type-locality: “Brazil”. TP

WIEN*N. COMB.

dispar (Hermann), 1912:186, fig. 71 (Atractia).

Type-locality: Peru (several localities not

originally mentioned). ST? N. COMB.

fulvipes (Hermann), 1912:185, fig. 70 (Atractia).

Type-locality: Brazil, Santa Catarina,

blumenau. TP WIEN. N. COMB.

lucidus (Hermann), 1912:192, fig. 74 (Atractia).

Type-locality: Brazil, Minas Gerais, Mar

d'Hespanha (as Espírito Santo, in error).

ST MUN. N. COMB.

marginatus (Osten Sacken), 1887:212 (Atractia).

Type-locality: Nicaragua, Chontales. TP

BMNH. N. COMB.

?minutus (Wiedemann), 1828:530 (Laphria).

Type-locality: “Brazil”. TP? N. COMB.

nigellus Hermann, 1912:199, fig. 76. Type-

locality: Peru, Meshagua, Urubamba R.

ST MUN.

pennatus (Hermann), 1912:196, pl. 5, figs. 55-56,

textfigs. 75a-b (Lophoceraea). Type-

locality: Peru, mouth of Pachitea R.,

150 m; Bolivia, Mapiri, Sarampiuní. ST

MUN. N. COMB.

pictus (Hermann), 1912:181, fig. 68 (Atractia).

Type-locality: “Venezuela”. TP WIEN.

N. COMB.

platycerus Hermann, 1912:202, fig. 77. Type-

locality: Peru, Meshagua, Urubamba R.

10124

Genus Lamprozona Loew

Laphria, subg. Lamprozona Loew, 1851:18.

Type-species, auricincta Loew (mon.).

Automolina Hermann, 1912:101. Type-species,

chilensis Hermann (orig. des.).

auricincta (Loew), 1851:18 (Laphria). Type-

locality: “Chile”. TP.

atratus Philippi, 1865:687 (Dasypogon).

Type-locality: Chile, Valdivia. TP.

sericeus Philippi, 1865:691 (Dasypogon).

Type-locality: “Chile”. TP SANT.

castaneipes Bigot, 1878:234. Type-locality:

“Chile”. TP OXF.

castanipes Bigot, 1879: ix, emend.

cyanescens Bigot, 1878:235 (Cormansis).

Type-locality: “Chile”. TP OXF.

chilensis Bréthes, 1925:105 (4Atomosia;

preocc. Hermann, 1912). Type-locality:

“Chile”. TP? lost.

chilensis (Hermann), 1912:103 (4utomolina).

Type-locality: Chile, Concepción. TP

Genus £Lycosimyia Hull

Lycosimyia Hull, 1958:102.

carrerai Hull (orig. des.).

Type-species,

carrerai Hull, 1958:103 (as carrerae, in error).

Type-locality: Brazil, Rio de Janeiro,

Rio de Janeiro. TP MZUSP.

fluviatilis (Carrera), 1960:152, fig. 5 (Atractia).

Type-locality: Brazil, Pará, Óbidos. TP

MZUSP. N. COMB.

Genus Oidardis Hermann

Oidardis Hermann, 1912:76. Type-species,

gibbosa Hermann (orig. des.).

Othoniomyia Hermann, 1912:119. Type-species,

triangularis Hermann (orig. des.). N.

SYN.

Othoniomyia, subg. Sphagolestes Hull,

1962:391. Type-species, nigrum Hull

(orig. des.). N. SYN.

Voluptarius Kaletta, 1978:48. Type-species,

curupaoensis Kaletta (orig. des.). N.

SYN.

lucundus Kaletta, 1978:52. Type-species,

aveledoi Kaletta (orig. des.). N. SYN.

aenescens Hermann, 1912:80. Type-locality:

Peru, Ucayali R., Unini. TP MUN.

aveledoi (Kaletta), 1978:54, pl. 1, figs. 4, 6, 7-9

(lucundus). Type-locality: Venezuela,

Aragua, Rancho Grande. TP FAUCV.

N COMB.

curupaoensis (Kaletta), 1978:50, pl. 1, figs. 1-3, 5

(Voluptarius). Type-locality: Venezuela,

Miranda, Curupao. TP FAUCV. N.

COMB.

Gayana Zool. 55(1), 1991

gibbosa Hermann, 1912:80. Type-locality: Peru,

Umuhuankiali, 500 m, Puerto

Bermúdez, 700 m; Bolivia, Chimate, 650

m. ST MUN.

gibba (Curran), 1930:10 (Eumecosoma) Type-

locality: Panama, Canal Zone, Barro

Colorado 1 TP AMNH. N. COMB.

(Hull), 1962:391 (Othoniomyia

(Sphagolestes)). Type-locality: Brazil,

Sao Paulo. TP? N. COMB.

triangularis (Hermann), 1912:120, figs. 47, 48

(Othoniomyia). Type-locality: Brazil,

Santa Catarina, Blumenau. ST MIL,

WIEN, MUN. N. COMB.

nigra

Genus Strombocodia Hermann

Strombocodia Hermann, 1912:165. Type-species,

elegans Hermann (orig. des.).

elegans Hermann, 1912:167, pl. 4, fig. 51, pl. $,

fig. 52, textfig 62. Type-locality: Peru,

Umuhuankiali, Urubamba R., 500 m.

TP MUN.

UNRECOGNIZED GENUS AND SPECIES

Genus Rhatimomyia Lynch Arribálzaga

1882:135.

Lynch

Rhatimomyia Lynch Arribálzaga,

Type-species, nitidula

Arribálzaga (mon.).

Rhatitomyia Williston, 1891:78, unjust. emend.

nitidula Lynch Arribálzaga, 1882:137. Type-

locality: Argentina, Buenos Aires,

Chacabuco. TP lost.

UNPLACED AND UNRECOGNIZED LAPHRIINAE

appendiculata Macquart, 1846:204 (1846:76), pl.

8, fig. 1 (4Atomosia). Type-locality:

French Guiana, Cayenne. TP lost.

bimaculata Walker, 1855:534, 550 (Laphria).

Type-locality: Brazil, “Amazon”. TP

lost (the two specimens at the BMNH

under this name do not agree with the

original description and therefore are

not the types).

brevicornis Macquart, 1838:76 (1839:192)

(Laphria). Type-locality: “Brazil”. TP

lost.

componens Walker, 1861:281 (Laphria). Type-

locality: “Mexico”. TP BMNH.

dichroa Wiedemann, 1828:526 (Laphria). Type-

locality: “Brazil”. TP FRAN (badly

damaged, without head. An

unrecognizable Atomoslini).

glauca Enderlein, 1914:251 (Laphria). Type-

locality: Ecuador, Coca, Archidona and

Canelos; Peru, Chanchamayo; Peru,

Loreto, Pebas (as Brazil, Amazonas, in

error). ST?

limbata Macquart, 1834:287 (Laphria). Type-

locality: French Guiana, Cayenne. TP

lost.

mellipes Wiedemann, 1828:526 (Laphria). Type-

locality: “Brazil”. TP FRAN (an

unrecognized Atomosiini).

modesta Philippi, 1865:685, fig. (Laphria). Type-

locality: Chile, Santiago. TP lost.

parvus Bigot, 1857:330 (Dasypogon). Type-

locality: “Cuba”. TP almost entirely

destroyed; only right pleura and one

wing and tergites remain, MNHNP.

pilipes Macquart, 1834:282 (Laphria). Type-

locality: “Brazil”. TP lost.

proxima Walker, 1855:537 (Laphria). Type-

locality: Brazil, Pará (i. e., Belém). TP

lost.

pusilla Wiedemann, 1828:532 (Laphria). Type-

locality: “Brazil”. TP FRAN

(unrecognized Atomosiini).

rubescens Bigot, 1878:225 (Laphria). Type-

locality: “Colombia”. TP?

sericans Walker, 1860:282 (Atomosia). Type-

locality: “Mexico”. TP lost.

similis Bigot, 1857:330, pl. 20, figs. 4, 4*

(Atomosia). Type-locality: “Cuba”. TP

lost.

transatlantica Schiner, 1868: 173 (Laphria).

Type-locality: “Venezuela”. ST WIEN.

violacea Macquart, 1846:202 (1846:74)

(Laphria). Type-locality: “Colombia”.

TP lost.

xanthopus Wiedemann, 1828:529 (Laphria).

Type-locality: “Brazil”. TP lost.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. er al.

Dissmeryngodes nigripes (Macquart). 1-2, Head, frontal and lateral views. 3, hind femur and tibia, lateral view. 4-6,

male terminalia, lateral, dorsal and ventral views. 7-8, aedeagus, lateral and dorsal views. 9, situation of the sper-

mathecae in the abdomen. 10, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

lie

Aa E

Els

Al J

()

0 E

10 IT! l

pe aa

- RM =

rr S

Fin AC

pcenar 17

Dissmeryngodes anticus (Wiedemann). 1 1-13, male terminalia, lateral, ventral and dorsal views. 14- 15, aedeagus, la-

teral and dorsal views. 16, situation of the spermathecae in the abdomen. 17, spermathecae.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphrimnae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. et al.

Aphestia annulipes (Macquart). 18-20, male terminalia, lateral, dorsal and ventral views. 21-22, aedeagus, lateral

and dorsal views. 23, situation of the spermathecae in the abdomen. 24, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

Lamprozona auricincta (Loew). 25, situation of the spermathecae in the abdomen. 26, spermathecae.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. et al.

Eumecosoma sp. 27-29, male terminalia, lateral, dorsal and ventral views. 30-31, aedeagus, lateral and dorsal views.

32. situation of the spermathecae in the abdomen. 33, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

ai Ún q

a ETT ATT

E o

=>]

Oidardis gibba (Curran). 44, situation of the spermathecae in the abdomen. 45, spermathecae.

Oidardis triangularis (Hermann). 46, situation of the spermathecae in the abdomen. 47, spermathecae.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. er al.

Hybozelodes lucidus (Hermann). 48-50, male terminalia, lateral, dorsal and ventral views. 51-52, aedeagus, lateral

and dorsal views.

Hybozelodes acuticornis Carrera. 53, situation of the spermathecae in the abdomen. 54, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

ys —

(MAN

MN e 552777

Hybozelodes lucidus (Hermann). 55, situation of the spermathecae in the abdomen. 56, spermathecae.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriimae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. ef al.

Lycosimyia sp. (Brazil. Pará: Santarém. Faz. Taperinha). 57-59. male terminalia, lateral. dorsal and ventral views. 60-61,

aedeagus, lateral and dorsal views. 62, situation of the spermathecae in the abdomen. 63. spermathecae. Lycosimyia sp.

(Brazil. Rio de Janeiro: Rio de Janeiro). 64, situation of the spermathecae in the abdomen. 65, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

L —

Atoniomyia sp. 66-68, male terminalia, lateral, ventral and dorsal views. 69-70, aedeagus, lateral and ventral views.

71, abdomen, sternites removed, showing situation of spermathecae in relation to sternites. 72, spermathecae.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. ef al.

Hodites punctissima Hull. 73, situation of the spermathecae in the abdomen. 74, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

0.25

Atomosia puella (Wiedemann). 75-77, male terminalia, lateral, ventral and dorsal views. 78-79, aedeagus, lateral

and dorsal views. 80, situation of the spermathecae in the abdomen. 81, spermathecae.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. ef al.

0.5

ÁS

Atomosia sp., near dasypus (Wiedemann). 82-84, male terminalia, lateral, dorsal and ventral views. 85-86,

aedeagus, lateral and dorsal views.

Atomosia armata Hermann. 87, situation of the spermathecae in the abdomen. 88, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

¡Jn

Ñl

SS WN

¡MIA

pñ

ÓN

SN Ñ

Cerotainia leonina Hermann. 89-90, head, frontal and lateral views. 91-93, male terminalia, lateral, dorsal and

ventral views. 94-95, aedeagus, lateral and dorsal views. 96 situation of the spermathecae in the abdomen. 97,

spermathecae.

Amer. gen. Asilidae VI. Laphrimnae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. et al.

Cerotainia lynchii (Williston). 98-100, male terminalia, lateral, dorsal and ventral views. 101-102, aedeagus, lateral

and dorsal views. 103, situation of the spermathecae in the abdomen. 104, spermathecae.

Gayana Zool. 55(1), 1991

INDEX

(Homonyms and synonyms in ¡talics, names marked with an asterisk (*) refer to unplaced or unre-

cognized taxa).

acuticornis Carrera, 1945, Hybozelodes: 64

aenescens Hermann, 1912, Oidardis: 65

affinis (Macquart), 1850 (Atomosia), Aphestia: 57

albiceps (Hermann), 1912 (Atonia), Atoniomyia: 60

albipes Hermann, 1912, Hybozelodes: 64

amapa, sp. n., Dissmeryngodes: 63

ancylocera (Schiner), 1868 (Atomosia), Atoniomyia: 60

andrenoides (Bromley), 1934 (Atomosia), Aphestia: 58

annulipes (Macquart), 1838 (Atomosia), Aphestia: 57, 58

anonyma Williston, 1901, Atomosia: 58

antennata (Banks), 1920 (Atomosia), Atomosiella: 59

anticus (Wiedemann), 1828 (Laphria), Dissmeryngodes: 62,

Aphestia Schiner, 1866: 55, 57

Aphractia, gen. n.: 55, 58, 60

*appendiculata Macquart, 1846, Atomosia: 66

argyropasta Hermann, 1912, Cerotainia: 60

argyrophora Schiner, 1868, Atomosia: 58

argyropus Schiner, 1868, Cerotainia: 60

argyropyga Hermann, 1912, Cerotainia: 60

armata Hermann, 1912, Atomosia: 58

Atomosia Macquart, 1838: 57, 58

Atomosiella Wilcox, 1937: 55, 59

Atonia Williston, 1889: 59

Atoniomyia Hermann, 1912: 56, 59

Atractia Macquart, 1838: 57, 60

atrata (Philipp), 1865 (Dasypogon), Lamprozona: 65

aurata Schiner. 1868, Cerotainia: 61

auricincta (Loew), 1851 (Laphria), Lamprozona: 65

Automolina Hermann, 1912: 65

aveledo¡ (Kaletta), 1978 (lucundus), Oidardis: 65

ayala Kaletta, 1974, Eumecosoma: 64

barbiellinii Curran, 1935, Atomosia: 58

basalis Curran, 1930, Bathropsis: 60

Bathropsis Hermann, 1912: 56, 60

beckeri Jaennicke, 1867, Atomosia: 61

bella Schiner, 1867, Cerotainia: 61

bequaerti Bromley, 1934, Atomosia: 58

bigoti Bellardi, 1861, Atomosia: 58

*bimaculata Walker, 1855, Laphria: 66

brasiliensis Schiner, 1866, Aphestia: 57

brasiliensis Schiner, 1867, Cerotainia: 61

*brevicornis Macquart, 1838, Laphria: 66

brevistylata (Williston), 1901 (Atonia), Atoniomyia: 60

calcarata Williston, 1901, Aphestia: 57

calceata Schiner, 1867, Aphestia: 57

calverti Hine, 1917, Eumecosoma: 64

camposi Curran, 1934, Cerotainia: 61

carmina Kaletta, 1974, Eumecosoma: 64

carrerai Hull, 1958, Lycosimyia: 65

castaneipes Bigot, 1878, Lamprozona: 65

castanipes Bigot, 1879, Lamprozona, emend.: 65

Catonomyia Hull, 1962: 62

Centrolaphria Enderlein, 1914: 62

Ceratotaenia Lynch Arribálzaga, 1880: 60

Cerotainia Schiner, 1866: 57, 60

cerverai Bromley, 1929, Atomosia: 58

chilensis (Bréthes), 1925 (Atomosia), Lamprozona: 65

chilensis (Hermann), 1912 (Automolina), Lamprozona: 65

clausicella (Carrera), 1960 (Atractia), Hybozelodes: 64

columbiana (Enderlein), 1914 (Centrolaphria),

Dissmeryngodes: 64

comatus (Hermann). 1912 (Atractia). Hybozelodes: 65

*“componens Walker, 1861, Laphria: 66

conjungens (Hermann), 1912 (Atractia), Hybozelodes: 65

coronata Schiner, 1867, Atractia: 60

costai, sp. n., Cyphomyractia: 62

coxalis Curran, 1930, Atomosia: 58

curupaoensis (Kaletta), 1978 (Voluptarius), Oidardis: 65

cyanescens (Bigot). 1878 (Cormansis). Lamprozona: 65

cyanescens Rondani, 1848, Atomosia: 58

Cyphomyiactia, gen.. n.: 61

Cyphotomyia Williston, 1889: 60

danforthi Curran, 1935, Atomosia: 58

dasypus (Wiedemann). 1828 (Laphria), Atomosia: 58

dasythrix Hermann, 1912, Cerotainia: 61

debilis Hermann, 1912, Cerotainia: 61

delgadoi Kaletta, 1978. Bathropsis: 60

*dichroa Wiedemann, 1828. Laphria: 66

dicromum Bigot. 1878. Eumecosoma: 64

dispar (Hermann). 1912 (Atractia). Hybozelodes: 65

dispar (Walker). 1855 (Atomosia). Dissmeryngodes: 64

Dissmeryngodes Hermann, 1912: 55, 62

dubia Bigot, 1878, Cerotainia: 61

elegans Hermann. 1812, Strombocodia: 66

Eumecosoma Schiner, 1866: 56, 64

eupoda (Bigot). 1878 (Cormansis). Atomosia: 59

Amer. gen. Asilidae VI. Laphriinae: Atomosiini: ARTIGAS, J.N. er al.

feminea Curran, 1930, Cerotainia: 61

flavipes Hermann, 1912, Cerotainia: 61

fluviatilis (Carrera), 1960 (Atractia), Lycosimyia: 65

fredericoi Carrera, 1952, Atomosia: 58

frontalis Curran, 1930, Atomosia: 58

fulvipes Carrera, 1946, Atoniomyia: 60

fulvipes (Hermann), 1912 (Atractia), Hybozelodes: 65

geniculata (Wiedemann), 1821 (Laphria), Atomosia: 58

gibba (Curran), 1930 (Eumecosoma), Oidardis: 66

gibbosa Hermann, 1912, Oidardis: 65, 66

*olauca Enderlein, 1914, Laphria: 66

grossa Carrera, 1946, Atoniomyia: 50

hirsutum Hermann, 1912, Eumecosoma: 64

hispidella (Hermann), 1912 (Atonia), Atoniomyia: 60

Hodites Hull, 1962: 57, 64

hondurana James, 1953, Atoniomyia: 58

Hybozelodes Hermann, 1912: 56, 60, 64

incisuralis Macquart, 1838, Atomosia: 58, 59

iracema, sp. n., Dissmeryngodes: 63

lucundus Kaletta, 1978: 65

jamaicensis Johnson, 1919, Cerotainia: 61

Josmayala Kaletta, 1978: 64

Lamprozona Loew, 1851: 55, 65

laterepunctata (Hermann), 1912 (Atonia), Atoniomyia: 60

laticeps Bromley, 1919, Cerotainia: 61

leonina Hermann, 1912, Cerotainia: 61

*limbata Macquart, 1834, Laphria: 66

limbativentris Lynch Arribálzaga, 1880, Atomosia: 59

limbiventris Thomson, 1869, Atomosia: 59

lineata Curran, 1930, Atomosia: 59

longicornis (Hermann), 1912 (Atractia), Aphractia: 58

longimana (Hermann), 1912 (Protichisma), Cerotainia: 61

Lophoceraea Hermann, 1912: 64

lucidus (Hermann). 1912 (Atractia), Hybozelodes: 65

Lycosimyia Hull. 1958: 56, 60, 65

lynch (Williston), 1889 (Cyphotomyia), Cerotainia: 60, 61

macquarti Bellardi, 1861, Atomosia: 59

maestrae Bromley, 1929, Atomosia: 59

marginata Hermann, 1912, Cerotainia: 61

marginatus (Osten Sacken), 1887 (Atractia), Hybozelodes:

melanopogon Hermann, 1912, Atomosia: 59

*mellipes Wiedemann, 1828, Laphria: 66

metalescens Schiner, 1868, Eumecosoma: 64

metallica Bromley, 1929, Atomosia: 59

mexicana Williston, 1901, Aphestia: 58

mikii (Williston). 1886 (Atonia). Atoniomyia: 59, 60

minima Curran, 1930, Cerotainia: 61

?minutus (Wiedemann), 1828 (Laphria), Hybozelodes: 65

* modesta Philippi. 1865, Laphria: 66

molle Bromley, 1934, Eumecosoma: 64

mollis (Hermann), 1912 (Atonia), Atoniomyia: 60

mucida Osten Sacken, 1887, Atomosia: 59

Neatonia Bromley, 1935: 59

nigellus Hermann, 1912, Hybozelodes: 64, 65

nigra Bigot, 1878, Aphestia: 57

nigra Bitot, 1878, Cerotainia: 61

nigra (Hull) 1962 (Othoniomyia (Sphagolestes)), Oidardis:

65, 66

nigripennis (Bellardi), 1861 (Atomosia), Cerotainia: 61

nigripes (Macquart), 1838 (Atomosia), Dissmeryngodes: 63,

nigroaenea Walker, 1851, Atomosia: 59

nitidula Lynch Arribálzaga, 1882, Rhatimomyia: 66

nuda Hermann, 1912, Atomosia: 59

Oidardis Hermann, 1912: 56, 65

ornatipes James, 1953, Cerotainia: 61

Tohoniomyia Hermann, 1912: 65

panamensis Curran, 1930, Atomosia: 59

Paratractia Hull, 1962: 58

*parvus Bigot, 1857. Dasypogon: 66

pennatus (Hermann), 1912 (Lopoceraea), Hybozelodes: 64,

peruviana Hermann, 1912, Bathopsis: 60

pictus (Hermann), 1912 (Atractia), Hybozelodes: 65

*pilipes Macquart, 1834, Laphria: 66

pilipes Thomson, 1869, Atomosia: 59

pilosipes Lynch Arribálzaga, 1880, Atomosia, emend.: 59

pinguis (Hermann), 1912 (Atonia), Atoniomyia: 60

platycerus Hermann, 1912, Hybozelodes: 65

pleuriticum (Wiedemann), 1828 (Laphria), Eumecosoma: 64

pritchardi Hull, 1960, Cerotainia: 61

propingua Schiner, 1868, Cerotainia: 61

Protichisma Hermann, 1912: 60

*proxima Walker, 1855, Laphria: 66

psilogaster (Wiedemann), 1828 (Asilus), Atractia: 60

pubescens Bromley, 1929, Atomosia: 59

puella (Wiedemann), 1828 (Laphria), Atomosia: 58, 59

pulverulenta Schiner, 1867, Atractia: 60

punctifera Hermann, 1912, Atomosia: 59

punctissima Hull, 1962, Hodites: 64

*pusilla Wiedemann, 1828, Laphria: 66

Rhatimomyia Lynch Arribálzaga, 1882: 66

Rhatitomyia Williston, 1891: 66

rhopalocera Lynch Arribálzaga, 1882, Cerotainia: 61

rica Curran, 1935, Atomosia: 59

rosalesi Carrera « Machado-Allison, 1963, Atomosia: 59

*rubescens Bigot, 1878, Laphria: 66

rubida (Hermann), 1912 (Atractia), Aphractia: 58

rufipes Macquart, 1847, Atomosia: 59

scalarata (Hermann), 1912 (Atonia), Atoniomyia: 60

scoriacea (Wiedemann), 1828 (Laphria), Atomosia: 59

selene Curran 1935, Atomosia: 59

*Sericans Walker, 1860, Atomosia: 66

sericea (Philippi), 1865 (Dasypogon), Lamprozona: 65

setigera (Hermann), 1912 (Atonia), Atoniomyia: 60

setosa Hermann, 1912, Atomosia: 59

shropshirei Curran, 1930, Eumecosoma: 64

*Similis Bigot, 1856, Atomosia: 66

soror Bigot, 1878, Atomosia: 59

Sphagolestes Hull, 1962: 65

spiculatus (Hull), 1962 (Catonomyia), Dissmeryngodes: 64

Gayana Zool. 55(1), 1991

staurophorum Schiner, 1868, Eumecosoma: 64

Strombocodia Hermann, 1912: 56, 66

tarsale Curran, 1930, Eumecosoma: 64

tenuis Curran, 1930, Atomosia: 59

tiarense (Kaletta), 1978 (Josmayala), Eumecosoma: 64

tibialis Macquart, 1846, Atomosia: 59

*transatlantica Schiner, 1868, Laphria: 66

triangularis (Hermann), 1912 (Othoniomyia), Oidardis: 65,

unicolor Macquart, 1838, Atomosia: 59

unicolor Hermann, 1912, Cerotainia: 61

venustula Lynch Arribálzaga, 1880, Atomosia: 59

viduata (Wiedemann), 1819 (Laphria), Atoniomyia: 60

*violacea Macquart, 1846, Laphria: 66

violaceithorax Lynch Arribálzaga, 1880, Cerotainia: 61

vivax (Hermann), 1912 (Atractia), Aphractia: 58

Voluptarius Kaletta, 1978: 65

willistoni Curran, 1930, Cerotainia: 61

xanthoptera (Wiedemann), 1828 (Laphria), Cerotainia: 60,

*xanthopus Widemann, 1828. Laphria: 59, 66

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1849:309-465 (text), 466-479 (expl. of figs., index), pls.

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ges 311-317 (expl. pls., figs.), 324-338 (combined index

of the 2 parts of this supplement, and pls. 1-14 were is-

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in F. D. Godman á O. Salvin, eds., Biologia Centrali-

Americana. Zoología-Insecta-Diptera 1:378 pp., 6 pls.,

London.

Manuscrito aceptado en diciembre de 1990

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JD) e D y o E

Gayana Zool. 55(1), 1991 ISSN 0016-531X

NOTICIAS

NEWS

WILDLIFE 2001: POPULATIONS

WILDLIFE 2001: POPULATIONS is an international conference intended for research workers and

agency personnel whose interest is the science, conservation, and management of vertebrate

populations (exclusive of fish and primates). Papers will assess the state of the art and set the

agenda for applied wildlife population. work on the verge of the 21st century. It is a followup of the

highly successful Wildlife 2000, which emphasized habitat modeling, and a companion publication

will be produced.

The conference will be held July 29 through 31, 1991, at the Oakland Airport Hilton Hotel in

Oakland, California. This hotel is a low-rise hotel with outside courtyards and gardens, and is away

from the downtown area, within a mile of the Oakland Aiport. Free parking and free shuttle buses

to the airport and rapid transit (BART) give easy access to the greater San Francisco Bay Area.

Morning General Sessions, with chairs, will be: Methods, Gary White; Modeling, Carl Walters;

and Threatened Species, Kathy Ralls. Afternoon sessions include: Small Mammals, Lloyd Keith;

Marine Mammals, Chuck Fowler; Waterfowl, Doug Johnson; Overabundant Populations, Fred

Wagner; Herps, Norman Scott; Large Herbivores, Fred Bunnell; Game Birds, John Roseberry;

Seabirds, David Nettleship; Passerine Birds, Barry Noon; Large Carnivores, Maurice Hornocker;

Raptors, Stan Temple; and Furbearers, Bill Clark.

Initial sponsors include the Bay Area Chapter of The Wildlife Society, Western Section of The

Wildlife Society, and Department of Forestry and Resource Management, University of Califor-

nia, Berkeley.

For further information contact the conference organizers, Dale McCullough (415) 642-8462 or

Reg Barrett (415) 642-7261, Dept. of Forestry and Resource Management, 145 Mulford Hall,

University of California, Berkeley, CA 94720 (Fax 415/643-5438).

(99)

11.

REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

La revista Gayana, dedicada al distinguido naturalista francés Claudio Gay, es el órgano oficial de Ediciones de la

Universidad de Concepción, Chile, para la publicación de resultados de investigaciones originales en el área de las

Ciencias Naturales. Está compuesta de las series Botánica, Zoologia y Miscelánea.

Las dos primeras aparecen en la forma de un volumen anual compuesto por cuatro números; Gayana Miscelánea es

aperiódica.

Gayana recibe trabajos realizados por académicos de la Universidad de Concepción y ocasionalmente los de otros in-

vestigadores nacionales o extranjeros de prestigio, elaborados según las normas del presente reglamento. La recepción

es permanente.

Gayana acepta trabajos escritos en idioma español o inglés. La publicación en otros idiomas deberá ser consultada

previamente al Director.

El manuscrito debe ser entregado en triplicado; una de las copias llevará las figuras originales.

El Director de la revista, asesorado por el Comité de Publicación, se reserva el derecho de aceptar o rechazar el ma-

nuscrito.

El manuscrito será enviado a pares para su revisión técnica.

La primera prueba de imprenta será enviada al autor principal para su corrección antes de la impresión definitiva. Si

ello fuere imposible o dificultoso, la corrección será realizada por el Comité de Publicación.

Los nombres científicos y las locuciones latinas serán las únicas que irán subrayadas en el texto. La primera vez que se

cite un organismo deberá hacerse con su nombre científico completo (género, especie y autor).

Las medidas deberán ser expresadas en unidades del sistema métrico: si fuera necesario agregar medidas en otros siste-

mas, las abreviaturas correspondientes deben ser definidas en el texto. Decimales con coma, no punto (Ejemplo: 0,5).

Las citas en el texto deben incluir nombre del autor y año [Ejemplo: Smith, J.G. (1952)]. Si hay varios trabajos de un

autor en un mismo año, se citará con una letra en secuencia adosada al año (1952a). Cuando hay más de dos autores

todos los nombres serán citados en la primera mención [Ejemplo: Smith, J.G., P.J. Jones and W.E. Williams (1981);

las referencias posteriores serán: Smith er al. (1981)].

La bibliografía incluirá todas y sólo las referencias citadas en el texto, dispuestas por orden alfabético del apellido del

primer autor, sin número que la anteceda. La literatura botánica será citada según el B-P-H (Botánico-Periodicum-

Huntianum) y la zoológica según el Style Manual of Biological Journals.

La nomenclatura de los trabajos botánicos y zoológicos se regirá por sus respectivos códigos.

Las ilustraciones y tablas deben ser adecuadas para, una vez reducidas, ocupar un ancho de 70 mm (una columna) o

150 mm (dos columnas) y una longitud no superior a 220 mm, incluido el espacio del texto explicativo.

Los dibujos deben ser de alto contraste y deben llevar una escala para facilitar la determinación del aumento.

Las figuras se numerarán en orden correlativo con números arábigos. Las tablas de igual modo con números roma-

nos. Cada tabla debe llevar un título descriptivo en la parte superior.

Las fotografías se considerarán figuras para su numeración. Serán en blanco y negro. brillantes, de grano fino y buen

contraste y deben ser acompañadas de una escala para la determinación del aumento.

En el reverso de las láminas originales se deberá indicar el nombre del autor, título del trabajo y número de las lámi-

nas.

Adjunto al manuscrito se entregarán en forma secuencial las explicaciones de cada una de las figuras.

El texto deberá contener: Título, título en inglés, nombre de los autores, dirección de los autores, Resumen, Abstract,

Keywords, Introducción, Materiales y Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones, Agradecimientos y Bibliogra-

fía.

El título debe ir todo escrito en letra mayúscula y expresar el contenido real del trabajo. Si incluye un nombre genéri-

co O especifico se indicará el rango sistemático inmediatamente superior.

Si por alguna circunstancia especial el trabajo debe ser publicado en forma diferente a las disposiciones anteriores, el

autor deberá exponer su petición al Director antes de enviarlo.

NO0ZJ]D unn mn

RECOMENDACIONES PARA PRESENTAR LOS

MANUSCRITOS A GAYANA

INTRODUCCION, MATERIALES Y METODOS, RESULTADOS, DISCUSION, CONCLUSIONES.

AGRADECIMIENTOS, BIBLIOGRAFIA. son títulos y se escribirán con MAYUSCULAS

(AGRADECIMIENTOS).

Subtítulos: VERSALITA

Nombres de los géneros y de las especies (cuando encabezan un párrafo): negrita cursiva

Nombres de sinónimos: cursiva

Nombres científicos en el texto: cursiva

Material estudiado: ALTA (8/10)

Indice de nombres científicos: ALTA (8/10)

En el índice de nombres científicos los nombres válidos en negrita cursiva y los sinónimos en cursiva

Los tipos de letra se señalan en el original como sigue:

Tipo impreso Nombre En manuscrito

Un probable origen Redonda no se señala

VALD ALTA se subraya tres veces: VALD

MATERIAL ESTUDIADO Versalitas se subraya dos veces: Material estudiado

a) crecen bien baja no se señala

Bromus berterianus Cursiva se subraya una vez: Bromus berterianus

BROMUS ALTA CURSIVA se subraya cuatro veces: BROMUS

nota: negrita se subraya con una línea ondulada: Nota:

Bromus racemosus negrita cursiva se subraya dos veces, con una línea recta y otra on-

dulada: Bromus racemosus

GAYANA

ZOOLOGÍA. VOLUMEN 558 NUMERO 1 1991

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS

Y DE RECURSOS NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA

Andrés O. Angulo

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR

Oscar Matthei J.

REPRESENTANTE LEGAL

Augusto Parra Muñoz

PROPIETARIO

Universidad de Concepción

DOMICILIO LEGAL

Víctor Lamas 1290, Concepción, Chile

EDITOR EJECUTIVO SERIE ZOOLOGIA

Luis E. Parra

COMITE ASESOR TECNICO

MIREN ALBERDI

Universidad Austral de Chile

SERGIO AVARIA

Universidad de Valparaiso

DANKO BRNCIC

Universidad de Chile, Santiago

DUARDO BUSTOS

niversidad de Chile, Santiago

(peo!

HuGo CAMPOS

Universidad Austral de Chile

JUAN CARLOS CASTILLA

Universidad Católica, Santiago

FERNANDO CERVIGON

Fundación Científica Los Roques, Venezuela

MÓNICA DURRSCHMIDT

Justus-Liebic Universitát Giessen, Alemania Federal

RAUL FERNANDEZ

Universidad de Chile, Santiago

JURKE GRAU

Universidad de Múnchen, Alemania

MARY KALIN ARROYO

Universidad de Chile, Santiago

Luis RAMORINO

Universidad de Valparaiso

BERNABÉ SANTELICES

Universidad Católica, Santiago

FEDERICO SCHLEGEL

Universidad Austral de Chile

JosÉ STUARDO

Universidad de Concepción

Top STUESSY

Ohio State University, U.S.A.

GUILLERMO TELL

Universidad de Buenos Aires, Argentina

HAROLDO TORO

Universidad Católica, Valparaíso

ISSN 0016-531X

CUNZANIA

ZOOLOGIA VOLUMEN 55 NUMERO 2

INDICE/CONTENTS

PARRA, L.E. Y H. IBARRA-VIDAL. Doina clarkei n. sp. de Oecophoridae: biología

y descripción de los estados postembrionales (Lepidoptera) ....ooooccocnccninnnoninccnnnos

Doina clarkei mn. sp. of Oecophoridae: biology and description of the post-

embrionic stages (Lepidoptera)

PAPAVERO, N. AND J.N. ARTIGAS. Phylogeny of the American genera of Solvi-

dae (Xylomyidae) (Diptera), with illustrations of the female spermatheca ..............

Filogenia de los géneros americanos de Solvidae (Xylomyidae) (Diptera), con

ilustraciones de la espermateca de las hembras

MOYANO, H.I. Bryozoa marinos chilenos VII: notas nomenclaturales sobre espe-

AE E a Ea

Bryozoa marinos chilenos VII: nomenclatural notes on littoral species l.

ARTIGAS, J.N. AND N. PAPAVERO. The American genera of Asilidae (Diptera):

Keys for identification with an atlas of female spermathecae and other morpholo-

gical details. VII. 1. Subfamily Stenopogoninae Hull. A preliminary classification

a diendo

Los géneros americanos de Asilidae (Diptera): claves para su identificación con

un atlas de las espermatecas de las hembras y otros detalles morfológicos. VII. 1.

Subfamilia Stenopogoninae Hull. Una clasificación preliminar en tribus.

PARRA, L.E. Revisión y filogenia del género Pachrophylla Blanchard, 1852 (sen-

su auctorum) (Geometridae: Larentiinae: Trichopterygidi) ...cooncncnncnnnnnnnnnnincnnn

Revision and phylogeny of the genus Pachrophylla Blanchard, 1852 (sensu auc-

torum) (Geometridae: Larentiinae: Trichopterygini).

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

1991

101

115

139

145

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GA Y, Hist. de Chile, 1:14 (1848)

Portada:

Langenicella variabilis, zooide con la ovicela

hiperestomial provista de una tábula crescénti

ca densamente perforada (ver pág. 129).

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORA ANIBAL PINTO, S.A.,

MAIPU 769, CONCEPCION-CHILE,

EN EL MES DE AGOSTO DE 1991

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA PARA

EDICIONES UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

Gayana Zool. 55(2):91-99, 1991

ISSN 0016-531X

DOINA CLARKEI N. SP. DE OECOPHORIDAE: BIOLOGIA Y

DESCRIPCION DE LOS ESTADOS POSTEMBRIONALES

(LEPIDOPTERA)*

DOINA CLARKEI N. SP. OF OECOPHORIDAE: BIOLOGY AND

DESCRIPTION OF THE POSTEMBRIONIC STAGES (LEPIDOPTERA)

Luis E. Parra** y Héctor Ibarra-Vidal***

RESUMEN

Se describe una nueva especie de Oecofórido para Chile.

Sobre la base de los caracteres morfológicos externos y de la

genitalia es asignado al género Doina Clarke, 1978, Se descri

ben además la larva y pupa y su biología. Es un insecto nati-

vo esqueletizador de Nothofagus obliqua Mirb. (Oerst.)

(roble). Posee a lo menos un ciclo anual; la fase larval se pre-

senta entre los meses de noviembre y junio. El período de

vuelo se extiende entre los meses de noviembre y enero. Se

ilustran los caracteres considerados y se entrega la distribu-

ción de la especie.

PALABRAS CLAVES: Lepidoptera, Oecophoridae, Doina clarkei

n. sp., Sistemática, Biología, Chile.

*Trabajo financiado por el Proyecto 20.38.14 de la Di-

rección de Investigación, U. de Concepción.

Depto. de Zoología, Universidad de Concepción, Ca-

silla 2407-10, Concepción, Chile.

***Centro Universitario Internacional Europa

Latinoamérica de Investigación y Formación en Ciencias

Ambientales. Universidad de Concepción. Casilla 156-C.

Concepción, Chile.

ABSTRACT

A new Oecophoridae moth from Chile is described. On the

basis of external morphological features and genitalia 1t 1s

asigned to the genus Doina Clarke, 1978. The larvae and

pupae is described and biology of the new species is to given.

This species is a native insect that frameworked of

Nothofagus obliqua Mirb. (Oerst.) (Southern beeche). This

species has a univoltine life cycle; the larval stage is present

between November and June. The flight period of the adults

occurs between November and January. The features

considered and life cycle are illustred.

KEYWORDS: Lepidoptera, Oecophoridae, Doina clarkei n. sp.,

Systematic, Biology, Chile.

INTRODUCCION

Teniendo presente el extraordinario desarrollo

del sector forestal y la importancia que está ad-

quiriendo el bosque nativo al ser manejado silvi-

culturalmente (Hartwig, 1989), hemos iniciado

una línea de investigación básica que nos permita

conocer taxonómica y biológicamente los micro-

lepidópteros asociados a nuestros árboles foresta-

les más importantes, siendo las especies del géne-

ro Nothofagus de gran interés en este sentido

(Rodríguez et al., 1983).

Gayana Zool 5512), 1991

En esta línea de trabajo se ha encontrado

una nueva especie de Oecophoridae, la cual se

describe en el presente trabajo, describiéndose

además sus estados de desarrollo y la biología en

su hospedador, el roble, Nothofagus obliqua.

Las especies de Oecophoridae presentes en

Chile han sido objeto de una revisión reciente

(Clarke, 1978), en la cual se establecen 34 géne-

ros y 62 especies, fundamentando la separación

de taxa en caracteres externos e internos (genita-

lia). No existen antecedentes biológicos de las es-

pecies previamente conocidas.

MATERIALES Y METODOS

El material utilizado en la descripción de esta

nueva especie, adultos y estados de desarrollo,

proviene de recolecciones hechas entre los años

1988 y 1990 en las provincias de Osorno, Temu-

co y Concepción. Todo este material se en-

cuentra depositado en el Museo de Zoología de la

Universidad de Concepción (MZUC).

El ciclo de vida se estudió principalmente

durante 1988 en Osorno (X Región) mediante

observación y recolecciones periódicas in situ en

robles infestados. El material procedente de otras

localidades fue criado en los laboratorios del De-

partamento de Zoología de la Universidad de

Concepción.

Las fotografías al microscopio electrónico de

barrido (SEM) fueron hechas por personal del La-

boratorio de Microscopía Electrónica de la Uni-

versidad de Concepción, de material previamente

separado y preparado de la especie bajo estudio.

Doina clarkei n. sp.

(Figs. 1-17)

Tipos:

Honoriro. Macho, CHILE, Osorno, Dic. 7,

1988, H. Ibarra-Vidal col. Depositado en el

Museo de Zoología de la Universidad de

Concepción, Concepción, Chile (MZUC).

ALotiro. Hembra, CHILE, Osorno, Dic. 7,

1988, H. Ibarra-Vidal col. Depositado en el

Museo de Zoología de la Universidad de

Concepción, Concepción, Chile (MZUC).

FIGURA 1. Doina clarkei n. sp., adulto en vista dorsal. Trazo indica 1 mm.

Doina clarkei n. sp. de Oecophoridae: PARRA, L.E. Y H. IBARRA-VIDAL.

DESCRIPCIÓN DEL ADULTO veces más largo que el segmento 2.

TAGMA CEFÁLICO (fig. 1): Frente, vertex, superficie TAGMA TORÁCICO (fig. 1): Patagias, tégulas, superfi-

dorsal de las antenas y palpos labiales cubiertos cie dorsal del tórax y superficie externa de las pa-

por escamas café oscuras con tintes oliváceos; tas, cubiertos por escamas café oscuras con tintes

ocelos ausentes; palpos labiales recurvados y se oliváceos;, superficie ventral de un color más cla-

extienden más allá del vertex, segmento 3 dos ro al igual que la superficie interna de las patas.

2004

FIGURAS 2-6. FIG. 2 Genitalia de la hembra en vista dorso-lateral; FIG. 3 signum aislado de la genitalia; FIG. 4 genitalia del

macho en vista ventral; FIG. 5 aedeagus en vista lateral y FIG. 6 genitalia en vista lateral. aa, apófisis anteriores; aed, aede-

agus, ap, apófisis posteriores; bc, bursa copulatrix; cor, cornutí, dub, ductus bursae; gn, gnathos, sac, saccus, Sig, signurrr,

un, uncus; va, valva; yXt, yuxta.

Gayana Zool. 55(2), 1991

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 1):

Superficie dorsal café oscura con tintes oliváceos

sobre la que destacan dos manchas blancas: una

en el sector medio de la región costal y otra en la

región central del margen interno. En el ápice del

ala, por el margen externo, existen escamas

piliformes (fleco) de color blanco, el resto del ala

con escamas piliformes oliváceas en el margen

externo e interno (fleco). Superficie ventral

similar al tono superficial y en ella destacan las

manchas blancas de la región costal y apical

solamente.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 1): En la

superficie dorsal y ventral gris oscura con esca-

mas de este mismo color en los márgenes (fleco),

siendo éstas similares en longitud al ancho de las

alas.

Taoma aspomINaL (fig. 1): Similar al patrón general

de las alas y el tórax en cuanto al color.

GenrTaLIA DEL MacHO (figs. 4-6): Uncus (un) de base

ancha (triangulariforme) con el ápice redonde-

ado, tan largo como la mitad del largo de la val-

va; gnathos (gn) como un cojín cubierto de espi-

nas; valvas (va) más largas que anchas, aproxima-

damente 1/3 de su ancho máximo, área costal

esclerotizada; la yuxta (yxt) es una pequeña placa

con dos proyecciones digitiformes posteriores

subiguales en tamaño; saccus (sac) truncado ante-

250 4

100 4

riormente. Aedeagus (aed) setoso curvado; vesica

(ves) con cornuti (cor) formado por una espina

que es 1/3 más pequeña que el largo de la funda.

GENITALIA DE LA HEMBRA (figs. 2-3): Bursa copulatrix

(bc) globosa a elíptica; el signum (sig) septabran-

quiado ocupa 1/3 del tamaño de la bursa; ductus

bursae (dub) largo y delgado, subigual en tamaño

a la bursa;, apófisis posteriores (ap) 2 veces más

largas que las anteriores (aa).

EXPANSIÓN ALAR DEL HOLOTIPO: 8 MM.

EXPANSIÓN ALAR DEL ALOTIPO: 9 mm.

MATERIAL EXAMINADO

1 macho (Holotipo), CHILE, Osorno, Dic. 7, 1988; 1 hembra

(alotipo), CHILE, Osorno, Dic. 7, 1988: 16 ejemplares

(machos y hembras) (paratipos), CHILE, Osorno, Dic. 7,

1988, colectados por H. Ibarra-Vidal (MZUC).

DESCRIPCIÓN DE La LARVA (figs. 7-12). Largo total 7

mm (+ 1 mm), ancho máximo 0.8 mm (+ 0.1

mm). Cuerpo de trece segmentos; segmentos to-

rácicos con patas, con cuatro pares de espuripe-

dios desde el sexto al noveno segmento y un par

de espuripedios anales en el último segmento; ca-

beza hipognata (fig. 7 a), mandíbula subcuadran-

gular con 4 dientes, dos cerdas en el margen ex-

terno (7 b).

FIGURA 7. a, cabeza de la larva en vista frontal; b, mandíbula derecha; c, área ocular. I-VI, ocelos; MO, > cerdas ocelares 1

y 2; oc, ocelos.

Doina clarkei n. sp. de Oecophoridae: PARRA, L.E. Y H. IBARRA-VIDAL.

Area ocular (7 c), con la línea que une los

ocelos (oc) 1 y IV pasa entre la base de las cerdas

0, y 0) pero más cerca de 0; la línea que une a

los ocelos III y V pasa por el centro del ocelo IV.

Complejo hipofaríngeo (fig. 8), palpos la-

biales con dos segmentos, splb;, es 4 veces mayor

a splb,, cerdas de los palpos labiales más largas

que la cerda estipular (cee), cplb, dos veces más

larga que la cplb,; espinerete (espt) cilíndrico de

ápice redondeado, cuyo ápice lleva la abertura de

posición subdorsal; placa basal (pb) alcanza la mi-

tad del largo del espinerete.

Primer segmento torácico (fig. 9) con las se-

tas L,. y, ¿ Y Hl,, p, ¿ en un escudo cervical; las setas

TIL, IV y V en tubérculo por delante del espirácu-

lo; seta VI unisetosa sobre un tubérculo pegado a

la coxa. Patas protorácicas compuestas por tres

segmentos subiguales entre sí. Mesotórax con la

seta [, en un tubérculo, seta l, junto al tubércu-

lo; seta II, , en un tubérculo; seta III libre; seta

e Y ;

FIGURA 8. Complejo O A la larva. a 2 Eno

de los segmentos 1 y 2 del palpo labial; espt, espinerete; pb,

placa basal; splb, , segmentos 1 y 2 del palpo labial.

FIGURAS 9-11. FIG. 9 Segmentos torácicos de la larva; FIG. 10 segmentos abdominales 2 y 3; FIG. 11 vista ventral del espu-

ripedio del tercer segmento abdominal. 1-VIII, cerdas de los segmentos abdominales.

Gayana Zool. 55(2), 1991

IV y V unidas por un tubérculo; seta VÍ inserta

en un tubérculo. Segmento metatorácico similar

al mesotórax, pero con la seta l, y I, aisladas y no

insertadas en un tubérculo. Patas meso y metato-

rácicas similares al protórax.

Primer, segundo, séptimo y octavo segmen-

tos abdominales (fig. 10) con las setas 1 y II en

una misma línea; seta III inserta en un tubérculo

por sobre y delante del espiráculo; setas IV y V

unidas en un tubérculo; seta VI en un tubérculo;

seta VII aislada. Segmentos 3-7 con las setas

L- VI. similares en forma y posición a los otros seg-

mentos abdominales; seta VII trisetosa, distri-

buida sobre un tubérculo por delante del espuri-

pedio; seta VIII en un tubérculo y en el vientre

del segmento abdominal (fig. 11). Espuripedios

con crochets dispuestos uniordinalmente (fig.

1110):

espp-

MATERIAL EXAMINADO

14 larvas, Osorno, Marzo 14, 1988; 5 larvas, Osorno, Abril

21, 1988; 1 larva, Pucoihue, Abril 21, 1988; 5 larvas, Osorno,

Abril 24, 1988, 4 larvas, Osorno, Mayo 2, 1988; 5 larvas,

Osorno, Mayo 6, 1988; 5 larvas, Osorno, Mayo 8, 1988; 1 lar-

va, Pucoihue, Junio 3, 1988; 6 larvas, Santa Juana, Febrero

7, 1989; 1 larva, Curacautín, Marzo 8, 1989; colectadas por

H. Ibarra-Vidal (MZUC).

DESCRIPCIÓN DEL CAPULLO (fig. 17).

El capullo va dispuesto en la parte ventral de la

hoja y está compuesto por tramas de seda cubier-

tas por fecas de la larva que la construye.

MATERIAL EXAMINADO

3 capullos, Osorno, Marzo 14, 1988; 7 capullos, Osorno,

Abril 6, 1988; 4 capullos, Osorno, Abril 21, 1988: 1 capullo,

FIGURAS 12-14. Pupa en vista: FIG. 12 ventral, FIG. 13 lateral y FIG. 14 dorsal. cer, ceratotecas; clp-Ibr, clipeus-labro; cre,

cremáster; espp, espiritrompa; fr, frente; ge, genas; n, ¿ notum del 1 al 3; o, ojo; pat, patagia; plm, palpo maxilar; pod, > po-

dotecas 1 y 2; ptt, pterotecas 2.

Doina clarkei n. sp. de Oecophoridae: PARRA, L.E. Y H. IBARRA-VIDAL.

Pucoihue, Abril 21, 1988; 3 capullos, Osorno, Mayo 2, 1988;

5 capullos, Osorno, Mayo 8, 1988; 2 capullos, Pucoihue,

Junio 3, 1988; 1 capullo, Curacautín, Marzo 8, 1989,

colectados por H. Ibarra-Vidal (MZUC).

DESCRIPCIÓN DE LA PUPA (figs. 12-14).

Obtecta de 3 mm de largo (+ 0.2 mm) y 1 mm de

ancho (+ 0.2 mm); de color castaño claro. En vis-

ta ventral (fig. 12), las pterotecas 2 (ptt,), las cera-

totecas (cer) y la espiritrompa (espp) alcanzan

hasta la región media o límite posterior del seg-

mento abdominal 6; la espiritrompa está estran-

gulada por las ceratotecas en el sector medio para

luego reaparecer en el sexto segmento abdomi-

nal; frente (fr) subrectangular; clipeo-labro (clp-

lbr) subcuadrangular; genas (ge) rectangular; ojos

(0) triangulariformes; palpo maxilar presentes al

lado externo de los ojos y sobre las podotecas 1 y

2 (pod y y 2); cremáster (cre) compuesto por seis

erochets apicales y ocho laterales, todos están

curvados en su ápice y son subiguales en tamaño

a excepción de los dos pares anteriores que sola-

mente alcanzan la mitad de la longitud de los

otros. En vista lateral (fig. 13) y en el límite poste-

rior de la frente-vertex, aparece la patagia de for-

ma hemicircular O bilobulada. En vista dorsal

(fig. 14), el pronotum (n) es rectangular, a ambos

lados lleva las patagias bilobuladas; el mesono-

tum (n)) es alargado con su extremo posterior

triangular; metanotum (nz) pequeño, pero más

ancho que el ny; los espiráculos (epr) están dis-

puestos en los extremos laterales de los segmen-

tos abdominales desde el segundo al séptimo.

MATERIAL EXAMINADO

l pupa, Pucoihue, Junio 3, 1988; 40 pupas, Osorno,

Diciembre 7, 1988, colectadas por H. Ibarra-Vidal. (MZUC).

HOSPEDADOR: Nothofagus obliqua Mirb. (Oerst.) (roble).

PERIODO DE VUELO. Noviembre a enero.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Concepción (36% 50” S) a

Pucoihue (Osorno) (40% 33” S) (fig. 15).

20 :

Iquique py

249 Antofagasta :

C opiapó*,

28" e

La Serena =

32 ¿

Valparaiso o) SANTIAGO

anc.

p “e

Talca"

36" AE

Concep

40" E

19 Montt

hos

440 . ?

o/o .

Coyhaiqu O

. e

FIGURA 15. Distribución de Doina clarkei n. sp. indicada por

estrellas y de Nothofagus obliqua (área punteada).

Gayana Zool. 55(2), 1991

DESARROLLO (fig. 16).

Doina clarkei n. sp. presentaría generación anual,

cuyos diferentes estados se distribuyen como lo

indica la fig. 16.

La emergencia de los adultos fue registrada

desde comienzos de noviembre hasta fines de di-

ciembre, teniendo un período de vuelo de alrede-

dor de dos meses y medio. Durante los días poste-

riores a su aparición ponen entre 1 y 9 huevos

FIGURA 16. Ciclo de vida de Doina clarkei n.sp.

por hoja, los que se ubican en forma indepen-

diente en el raquis por el revés de la hoja, cerca

del vértice entre éste y una nervadura lateral. La

larva, al eclosionar a mediados de noviembre, ho-

rada el raquis construyendo una pequeña galería

donde se alimenta, a lo menos, en su primer esta-

dio. Sus excretas, que une con seda, las va acu-

mulando fuera de la galería. Este estadio se ha

observado también a comienzos de otoño. En sus

estadios posteriores la larva vive oculta en otra

galería que ubica paralela y vecina al raquis,

entre ambas cutículas y bajo el capullo formado

con sus excretas. Desde allí sale a alimentarse es-

FIG. 17. Hospedador, mostrando el daño producido por la es-

pecie bajo estudio.

queletizando la hoja, siguiendo un recorrido que

se evidencia por la prolongación del capullo (fig.

17). Hacia fines de mayo, previo a la caída de las

hojas, las larvas migran hacia las ramas gruesas O

al tronco del roble y, bajo las cortezas, constru-

yen sus capullos para proceder a la pupación; el

estado pupal se extiende desde esa época hasta fi-

nes de diciembre.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Doina clarkei n. sp. presenta una modificación

única dentro de las especies en que se conoce, es-

to es, el tercer segmento del palpo labial es más

largo que el segundo, carácter que se contradice

con lo dicho por Clarke op. cit.; sin embargo los

caracteres dados por la genitalia de la hembra nos

confirman que esta especie está dentro del género

descrito por este mismo autor. Otra modificación

dice relación con la armadura genital de la

hembra, esto es, la longitud del ductus bursae

que es similar al de la bursa copulatrix, en cambio

para las otras especies la longitud observada es

mayor. En cuanto a la morfología del signum,

aparece muy relacionada a la especie D. sca-

riphista (Meyrick) —también presente en Chi-

le—, pero a diferencia de ésta posee un ductus

mucho más corto.

Doina clarkei mn. sp. de Oecophoridae: PARRA, L.E. Y H. IBARRA-VIDAL.

En relación a la genitalia del macho, ésta se

diferencia de las otras especies por el tamaño del

cornuti, el cual es subigual en largo a la funda y

por la forma subovoidal del gnathos, existiendo

poco parecido con las demás especies del género.

Como esqueletizador, la mayor incidencia

del ataque manifestado por la pérdida de superfi-

cie fotosintética ocurre en árboles adultos y re-

novales hacia fines del verano, desde febrero en

adelante. Por ello, el daño no sería significativo

durante una parte importante del período de cre-

cimiento vegetativo.

La existencia de primeros estadios larvales

hacia comienzos de abril nos indicaría tal vez una

eclosión diferencial de las larvas o la presencia de

otro ciclo de vida cuyos estados adultos no

fueron detectados durante el período estival, don-

de hubo un menor esfuerzo de recolección. En es-

te caso la especie sería bivoltina.

Es muy probable que D. clarkei n. sp. se en-

cuentre en toda el área de distribución de N. obli-

qua, dada su estrecha asociación con ésta (Fig.

15).

AGRADECIMIENTOS

A la Dirección de Investigación de la Universi-

dad de Concepción por su apoyo económico

(Proyecto 20.38.14); al Sr. Héctor Ibarra Rojas,

por su colaboración en el trabajo de campo. Tam-

bién hacemos extensivos nuestros agradecimien-

tos al siguiente personal de la Universidad de

Concepción: al Sr. José Bustos, del Depto. de Zo-

ología, por la realización de los esquemas, al Sr.

Hipólito Rifo por la lámina del adulto y al perso-

nal del laboratorio de Microscopía Electrónica

por la microfotografía del presente trabajo.

LITERATURA CITADA

CLARKE, J.F.G. 1978. Neotropical Microlepidoptera, XXI:

New Genera and Species of Oecophoridae from Chile.

Smith. Contrib. Zool., 273:i-v, 1-80.

HARTWIG, F. 1989. Visión del Desarrollo Forestal de Chile.

Santiago, Chile. 105 pp.

RODRÍGUEZ, R.M.; QUEZADA, M. y O. MATHEI. 1983. Flora

Arbórea de Chile. Edit. Universidad de Concepción,

Concepción, Chile. 408 pp.

Manuscrito aceptado en marzo de 1991]

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Gayana Zool. 55(2):101-113, 1991

ISSN 0016-531X

PHYLOGENY OF THE AMERICAN GENERA OF SOLVIDAE

(XYLOMYIDAE) (DIPTERA), WITH ILLUSTRATIONS OF THE

FEMALE SPERMATHECA*

FILOGENIA DE LOS GENEROS AMERICANOS DE SOLVIDAE

(XYLOMYIDAE) (DIPTERA), CON ILUSTRACIONES DE LA

ESPERMOTECA DE LAS HEMBRAS

Nelson Papavero** 8 Jorge N. Artigas*

ABSTRACT

A brief history of the taxonomy of the family Solvidae is

given and a phylogeny presented for the three American

genera: Solva (s.l.) 1s considered the sister-group of

Arthropeina Lindner, and the ancestral species of both

genera is considered as the sister-group of the ancestral

species of Macroceromys Bigot. The female spermatheca

offers valuable characters for the distinction of these three

genera.

KEYWORDS: America, Diptera, Solvidae, Xylomyidae,

Phylogeny, Spermatheca.

“This research was supported by the Fundagao de

Amparo a Pesquisa do Estado de Sáo Paulo (FAPESP,

Grants 85/1772-5, 86/3327-1 and 87/3170-8).

**Museu de Zoologia $ Instituto de Estudos

Avangados, Universidade de Sao Paulo. Researcher of the

Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e

Tecnológico (CNPq, Proc. 30.0994/79).

***Departamento de Zoologia, Facultad de Ciencias

Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de

Concepción. Proyecto investigación Dirección de

Investigación Universidad de Concepción N* 20.38.12.

101

RESUMEN

Se presenta una breve historia de la taxonomía de la familia

Solvidae con una propuesta de filogenia de los tres géneros

americanos: Solva (s.l.) se considera el grupo hermano de

Arthropeina Lindner y la especie ancestral de esos dos géne-

ros como el grupo hermano de la especie ancestral de Macro-

ceromys Bigot. Las espermatecas de las hembras brindan va-

liosos caracteres para la distinción de los tres géneros.

PALABRAS CLAVES: América, Diptera, Solvidae, Xylomyidae,

Filogenia, Espermateca.

A BRIEF HISTORY OF THE TAXONOMY OF THE SOLVIDAE

In 1820 Meigen created the genus Subula to

include some of the species he had previously

described in Xylophagus (varius, marginatus and

maculatus). Xylophagus varius was subsequently

designated by Rondani (1856:172) as the type-

species of Subula Meigen. This species has a two-

segmented palpus, the hind femur is more or less

elongated and cylindrical and bears no denticles

on its ventral surface, the first abdominal tergite

has a very wide membranous area, M), ends

Gayana Zool. 55(2), 1991

before the wing margin, C ends in M,, the

transverse crossvein m-cu is present, and the

antenna has elongated flagellomeres (cf. Hennig,

1967: figs. 20 (wing), 24 (abdominal tergites 1

and 2 and hind leg), 30 (antenna).

Walker (1859) erected Solva for his Oriental

species inamoena;, Solva has an incrassate hind

femur bearing a row of denticles on its ventral

surface.

As Subula Meigen was preoccupied (Subula.

Schumacher, 1817), Rondani rebaptized it as

Xylomya; the type-species is, therefore,

Xylophagus varius Meigen (automatically).

Apparently unaware of this fact, Williston also

proposed a new name for Subula Meigen-

Subulaomyia.

“1. my und cu; nahe der Basis durch Querader verbunden [i.e., crossvein m-cu present]

Bigot (1877) described the first American

representative of this group-Macroceromys

(type-species, fulviventris Bigot, mon.; from

Mexico). This species has very slender and

elongate hind femora without denticles on the

ventral surface, the first abdominal tergite has a

very narrow membranous area, elongated

antennal flagellum and a one-segmented palpus.

Enderlein (1913) started the confusion

within this group of flies. He wrongly designated

Xylophagus maculatus Meigen as the type-

species of Xylomya Rondani; he erected two

genera more, Prista (Oriental) and Subulonia

(Neotropical), related to Solva Walker; he

ignored Macroceromys Bigot. He distinguished

those genera by the following key (slightly

modified):

my und cu; nahe der Basis eine Strecke weit verschmolzen (Mediocubitalquerader fehlt).

Fúhler 10 gliedrig, normal. mz nicht verkúrzt. (Hinterschenkel etwas verdickt,

verbreitert un lángs des unteren Randes fein gezáhnelt)

2(1). 3. Fúhlerglied besonders verdickt und gross; 4.-10. Glied stark verkúrzt (quer). (mz mehr

oder weniger stark verkúrzt. Hinterschenkel etwas verbreitert, verdickt und lángs

des unteren Randes mit feiner korniger Záhnelung)

3. Fúhlerglied wohl lánger als die úbrige, aber niemals gross und dick; 4.-6. Glied

nicht quer. my nicht verkúrzt

3(2). Interschenkel nicht verdickt und ohne Záhnelung

Hinterschenkel etwas verbreitert und verdickt un lángs des unteren Randes mit

feiner kórniger Záhnelung

Let it be noticed that in Enderlein's key

“Xylomya” corresponds to Macroceromys Bigot,

as can be seen by the characters given.

Moreover, Xylophagus maculatus Meigen,

which was erroneously fixed by Enderlein as the

type-species of Xylomya sens Enderlein is clearly

a Macroceromys (cf. Hennig, 1967: figs. 18

(wing), 22 (abdominal tergites 1 and 2 and hind

leg), 27 (antenna)). From the on, “Xylomya” (we

are going to indicate this concept by Xylomya

sensu Enderlein) would be used by all subsequent

authors in the meaning of Macroceromys Bigot.

102

AS 2

TO Prista Enderlein

E Subulonia Enderlein

RA A A ES IS AI 3

A o E “Xylomya”

A TI Solva Walker”

Meijere (1914) erected the genus

Ceratosolva (type-species, cylindricornis Meijere,

Oriental). This genus is curiously “intermediary”

between Xylomya Rondani (like this Ceratosolva

has a slender, cylindrical hind femur) and Solva

Walker (Ceratosolva has ventral denticles on the

ventral surface of the hind femur, but is not

incrassate as in Solva); in addition, it has m-cu

present and the antennal flagellum is elongate.

Enderlein (1920) described Hanauia (for

Xylophagus marginatus Meigen); like Solva, this

species has an incrassate hind femur with a row

Phylogeny of the American genera of Solvidae: PAPAVERO, N. € J.N. ARTIGAS

of denticles on the ventral surface; m-cu, in

Hanauia, is reduced to a mere point.

Brunetti (1920) created Pararthropeas (type-

species, thereviformis Brunetti, Oriental), also

apparently related to Solva Walker (i.e., hind

femur incrassate, with denticles on the ventral

surface).

Pleske (1925) described, from the

Palaearctic, the genus Nematoceropsis (type-

species, ¡ibex Pleske), apparently related (or the

same as?) to Macroceromys Bigot.

James (1939) erected the subgenus

Formosolva (of Solva) (type-species, concavifrons

James, Oriental), declaring that it can “be

distinguished from Ceratosolva [Meijere] by the

longer antenna, the broad, concave front and the

long first antennal segment”. Formosolva has,

like Ceratosolva, a more or less slender and

elongate hind femur with a series of denticles on

the ventral surface, and m-cu is present.

Hull (1944) added to Solva the subgenus

Phloophila (type-species, pallipes Loew,

Nearctic); it has the hind femur incrassate, with

ventral denticles (therefore belonging to the

Solva-group); m-cu is reduced to a point (differing

in this aspect from Subulonia Enderlein, which

has a distinct m-cu).

Steyskal (1947) revised the Nearctic species

of Solvidae, accepting only two genera, and

introduced some interesting new morphological

characters, as can be seen in his key:

“Hind femora swollen and furnished beneath with minute teeth, flagellum of antennae with the

joints distinctly although but slightly separated, the terminal joint twice as long as the

preceding one, with a short but distinct conical bare shining tip, the first joint sometimes

considerably enlarged; the second abdominal tergite membranous medianly except the

posterior margin, allowing itself to fit closely to the metanotum when the abdomen is greatly

upflexed; wings with at least one branch of the media not reaching margin, crossvein m-cu

short or absent; all veins microsetate above

A IS, sos hn Solva Walker.

Hind femora not markedly thicker than the others and lacking teeth below; flagellum with the

joints apparently fused, the first joint never enlarged; the second abdominal tergite not

membranous anteromedianly; wing with all branches of media strong and reaching margin,

crossvein m-cu well developed; wing veins posterior to radius not microsetate

What Steyskal called “Xylomya” (because he

accepted Enderlein's fixation of Xylophagus

maculatus Meigen as the type-species) is

Er “Xylomya””

undoubtedly Macroceromys Bigot. It should be

noticed that the membranous area is situated on

tergite 1 (and not 2 as in the key) (Textfig.1).

TEXTFIG. 1. Abdominal tergites 1-2, 9. A. Macroceromys moiwana (Matsumura); B. Solva procera (Frey).

Tergite 2. (apud Nagatomi 8: Tanaka. 1971).

103

1: Tergite 1; 2.

Gayana Zool. 55(2), 1991

Steyskal placed Subulonia Enderlein, 1913,

Hanauia Enderlein, 1913, and Phoophila Hall,

1944, in the synonymy of Solva Walker, 1859.

Frey (1960) recognized three groups of

species within the family Solvidae:

1. Hind femur cylindrical, without denticles on the ventral surface -*Xylomya' (1.e., Macroceromys

Bigot; Nematoceropsis Pleske was synonymized here);

2. Hind femur incrassate, with denticles on the ventral surface - Solva Walker,

3. Hind femur cylindrical, with denticles below - Ceratosolva Meijere.

THE CONTRIBUTION OF. NAGATOMI € TANAKA (1971)

A major advance in the knowledge of the Solvi-

dae as contributed by Nagatomi € Tanaka

(1971), in their revision of the Japanese species.

The two authors accepted as valid the genera

Arthropeina Lindner (1949; this genus differs

from all other genera in the shape of the antennal

flagellum; Lindner described it from the Neotro-

pics; type-species, fulva Lindner), Cenomyiodes

Brunetti (we doubt this genus belongs here) and

Solva Walker, with two “subgenera”- Solva pro-

per and Macroceromys Bigot. Nagatomi 6: Tana-

ka included in the synonymy of Solva s.s. the ge-

nera Xylomya Rondani, Subulonia Enderlein,

Prista Enderlein, Ceratosolva Meijere, Pa-

rarthropeas Brunetti, Hanauia Enderlein, and

the subgenera Formosolva James and Phloophila

Hull: Nematoceropsis Pleske was considered a

synonym of Macroceromys Bigot.

The best contribution of Nagatomi € Tana-

ka is the careful study of the male terminalia of

the Japanese species; the terminalia affords many

important and clearcut characters for the separa-

tion of the species. This can be resumed in the

following manner (we are reinterpreting here so-

me of the original data; numbers of figures cited

in parentheses refer, of course, to Nagatomi 4

Tanaka's 1971 paper):

1. Hypandrium present, its mid-anterior margin deeply concave, free from base of basistyli (4E) or

fused to bases of basistyli(3E, SE, 6E, 7E, 9B). Epandrium with a pair of laterodistal processes

(3E, 4F, 5F, 6F, 7F, 9C). 4edeagus large (3D, 4D, 5D, 6D, 7D, 9D). Dististylus large and bro-

ad, its base more or less constricted (3D, 4D, 5D, 6D, 7D, 9A). “Interbases” present (3D, 4D,

5D, 6D, 7D, 8A). Sternite 8 with a pair of apical flat processes (3G, 4G, 5G,6G, 7G, 9D)

nana sra ae Doa EA a] e Macroceromys Bigot.

Hypandrium absent (12E, 13E, 14E, 15F). Epandrium without a pair of laterodistal processes

UZECIECNLE DO o: 2

2(1). “Interbases” absent (12D, 13D, 14D-E). Sternite 8 without a pair of apical flat processes. Dis-

tistylus present (12D-E, 13D-E, 14D-E). (Antennal flagellum shortened. Hind femur incrassa-

te, with denticles on ventral surface) Solva, group 1.

“Interbases” present, very large (long and broad) (15E-F). Srernite $ with a pair of apical flat

processes (15H). Dististylus absent (15E). Aedeagus small. Antennal flagellum elongate. Hind

femur incrassate, but with very small denticles beneath, “which may be overlooked”

A A A O Solva, group 2.

104

Phylogeny of the American genera of Solvidae: PAPAVERO, N. € J.N. ARTIGAS

Characters in italics represent, according to

us, apomorphic characters (polarized by

outgroup comparison, the outgroup being all the

other Brachycera).

It is interesting to note that the presence of a

pair of apical flat processes on sternite 8 is

probably homoplastic, having independently

evolved in Macroceromys and group 2 (Solva

procera (Frey) of Solva. It becomes manifest,

from the above list of characters, that at least

three sound (phylogenetic) groups of species (let's

say genera) exist in Japan.

The same should be made for the rest of the

Solvidae in the world. Dissections of male

terminalia are needed, to decide on the validity of

the nominal genera and subgenera thus far

proposed. It is very likely that many of them will

prove to be valid concepts, or that new genera

may be needed.

To resume the present situation within the

Solvidae, we may say that this family can be

divided in the following manner (pointing out at

the same time the open taxonomic problems):

l. A group of species with tergite 1 with a small, reduced membranous area; palpus with only

one segment; hind femur cylindrical, elongate, without denticles on the ventral surface -

Macroceromys Bigot (?= Nematoceropsis Pleske; the latter should be better studied in order

to show wether it really belongs to the Solvidae and, in the affirmative case, wether it is dis-

tinct or not from Macroceromys).

Dale

A group of species with very large membranous area on tergite 1; palpus two-segmented:

Basal 6 antennal flagellomeres fused, 8th flagellomere elongate; hind femur cylindrical,

without ventral row of denticles - Arthropeina Lindner;

2.2. Antennal flagellum never as above; other combinations of characters:

Hind femur cylindrical, elongate, without denticles on ventral surface;

m-cu present - Xylomya Rondani (with Xylophagus varius Meigen as type-

species);

Hind femur cylindrical, more or less elongate, with denticles on ventral

surface; m-cu present - Ceratosolva Meijere and Formosolva James;

Hind femur incrassate, with denticles on ventral surface; m-cu variable -

Solva Walker, Subulonia Enderlein, Prista Enderlein, Hanauia Enderlein,

Pararthropeas Brunetti, Phloophila Hull and Solva procera (Frey).

Notice that Xy/omya Rondani is entirely

based on plesiomorphic characters. Only

dissections of male terminalia and female

spermathecae could help to clarify the situation

above.

PHYLOGENY OF THE AMERICAN GENERA

We are considering here the groups

Macroceromys Bigot, Arthropeina Lindner and

Solva authors. Dissection of the female

105

spermathecae showed some very beautiful

characters, which help extraordinarily well in the

construction of the phylogeny. Our hypothesis is

shown in Textfig. 2.

The characters employed in the

phylogenetic reconstruction are the following

(characters in ¡talics are in the apomorphic

condition; polarization was made taking the

remaining groups of Brachycera as the

outergroup):

Gayana Zool. 55(2), 1991

Palpus two-segmented (Palpus one-

segmented)

Tergite 1 without membranous area or, if

membranous area present, very small

(Tergite 1 with very large membranous area,

almost reaching margin of tergite 1)

Three spermathecae present (Two

spermathecae present).

C present beyond M) (C absent beyond M )

Antennal flagellomere clearly separated

(Basal 6 antennal flagellomeres fused, Sth

elongate)

Spermathecal capsule not showing layers

(Spermathecal capsule 3-layered)

Remnant of middle spermathecal duct

present (No vestige of duct of middle

spermatheca)

Crossvein m-cu present (Crossvein m-cu

absent).

Most unfortunately, the male terminalia of

the American “Solva” and Arthropeina are not

known (there are no males in the collections

seen); in the future they may add valuable

characters for the phylogeny.

KEY TO THE AMERICAN GROUPS OF SOLVIDAE

MACROCEROMYS

ARTHROPEINA

SOL VA

TEXTFIG. 2. Hypothetical phylogen y of the American groups

of Solvidae.

1. Palpus one- segmented. Membranous area at base of tergite 1 not evident or ending far away

from posterior margin of that tergite (cf. Hennig, 1967: figs. 22-23 (p. 19). Hind femur

long and slender, narrower than hind coxa and without a series of denticles on ventral sur-

face. Crossvein m-cu present. Costa ending in M) or M |. Three spermathecae present, the

lateral ones with a long duct (reaching first abdominal segment and then bending back-

wards to segment 5) and more or less ovoid capsules, the median one with a very short

duct and an exceedingly voluminous capsule (twice or more volume of lateral ones) (Figs.

1-4). Male with hypandrium present .......

TA IR EROS Se AS DAS Macroceromys Bigot

Palpus one- segmented. Abdominal tergite 1 with a more or less large, semicircular, basal,

membranous (the integument very thin and transparent), anteriorly concave, pale area,

which extends almost to the posterior margin of that tergite (cf. Hennig, 1967:figs. 24-25

(p. 19)). Posterior femur either slender or incrassate, either with or without denticles on

ventral surface. Costa ending in M¡. Crossvein m-cu either present or absent. Only two

Phylogeny of the American genera of Solvidae: PAPAVERO, N. € J.N. ARTIGAS

spermathecae present, the central one either absent or reduced to a short, whip-like

Mann AE A A A ais 2

2(1). Antennal flagellum with 8 distinct flagellomeres, which become gradually narrower towards

apex. Hind femur incrassate, almost as wide as hind coxa, with a row of small, short

denticles on ventral surface, except in the immediate basal portion. Crossvein m-cu

absent. Central spermatheca totally absent, not even vestige of duct left, the lateral

spermathecae with an extremely long duct, which performs seven and a half bends inside

the abdomen (Figs. 5-7). Male terminalia with hypandrium absent

Solva, authors (American species)

Antennal flagellum with the basal 6 flagellomeres fused, spindle-shaped, the 7th flagellomere

short but evident, the 8th greatly elongate, almost as long as the basal six flagellomere to-

gether. Hind femur slender and without ventral row of denticles. Crossvein m-cu present.

Spermathecae: only the lateral ones present, the ducts moderately long, coiled; the central

spermatheca represented only by a short, whip-like remnant of the duct (figs. 8-9). Male

terminalia unknown .Arthropeina Lindner

CATALOGUE OF NEOTROPICAL SOLVIDAE

(XYLOMYIDAE)

Genus Arthropeina Lindner

Arthropeina Lindner, 1949: 189. Type-species,

fulva Lindner (mon.).

fulva Lindner, 1949: 789, fig. 3 (antenna). Type-

locality: not stated (but undoubtedly

Brazil, Santa Catarina, Nova

Teutónia). Ref.- Lindner, 1969.

Genus Macroceromys Bigot

Macroceromys Bigot, 1877: 1xxiii. Type-species,

fulviventris Bigot (mon.).

Xylomya, authors, not Rondani.

americanus (Wiedemann), 182la: 1 (1821b: 51)

(Xylophagus). Type-locality: “North

America”. Distr.- Wyoming to

Quebec, s. to Texas and Mississippi;

Mexico. N. COMB.

elongatus (Osten Sacken), 1886: 62 (Subula).

Type-locality: Guatemala, Capetillo.

Distr.- Guatemala. N. COMB.

fulviventris Bigot, 1879: 187. Type-locality:

“Mexico”. Distr.- Mexico.

fulviventris Bigot, 1877: 1xxiii

nudum).

prista (Enderlein), 1913: 541 (Xylomyia). Type-

locality: Mexico, Chiapas. Distr.-

Mexico (Chiapas). N. COMB.

(nomen

107

Genus Solva Walker, sensu lato

?Subula Meigen, 1820: 15 (preocc. Schumacher,

1817). Type-species, Xylophagus

varius Meigen (Rondani 1856: 172)

(Palearctic).

Solva Walker, 1859: 98. Type-species, inamoena

Walker (mon.) (Oriental).

?Xylomya Rondani, 1861: 11 (nom. nov. for

Subula Meigen). Type-species,

Xylophagus varius Meigen (aut.).

?Subulaomyia Williston, 1896: 43 (as Subula

Omyia) (nom. nov. for Subula

Meigen, but deleted in Corrigenda, p.

1v). Type-species, Xylophagus varius

Meigen (aut.).

?Subulonia Enderlein, 1913: 545. Type-species,

truncativena Enderlein (orig. des.)

(Neotropical).

?Prista Enderlein, 1913: 546. Type-species,

Subula vittata Doleschall (orig. des.)

vittipes Bezzi (Oriental).

2Ceratosolva Meijere, 1914: 21. Type-species,

cylindricornis Meijere (mon.) (O-

riental).

?Hanauia Enderlein, in Brohmer, 1920: 281.

Type-species, Xylophagus margi-

natus Meigen (Enderlein, 1921c: 170)

(Palearctic).

?Pararthropeas Brunetti, 1920: 108. Type-

species, thereviformis Brunetti (orig.

des.) (Oriental).

?Solva subg. Formosolva James, 1939: 32. Type-

Gayana Zool. 55(2), 1991

species, concavifrons James (orig.

des.) (Oriental).

?Solva, subg. Phloophila Hull, 1944: 263. Type-

species, Subula pallipes Loew (orig.

des.) (Nearctic).

?brasiliana (Lindner), 1949: 791 (Subulonia).

Type-locality: Brazil, Santa Catarina,

Nova Teutónia.

?flavicoxis (Enderlein), 1921: 172 (Hanauia).

Type-locality: Paraguay, San Bernar-

dino.

?pallipes (Loew), 1863: 6 (Centuria 3, n% 9)

(Subula). Type-locality: USA, Illinois,

Wisconsin. Distr.- USA, Canada,

“?Middle America”.

?truncativena (Enderlein), 1913: 545 (Subulonia).

Type-locality: Costa Rica.

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Manuscrito aceptado en marzo de 1991

108

Phylogeny of the American genera of Solvidae: PAPAVERO, N. € J.N. ARTIGAS

INDEX

(Synonyns in italics)

americanus (Wiedemann), 1821 (Xilophagus), Macroce-

romys: 107

Arthropeina Lindner, 1949: 107

brasiliana (Lindner), 1949 (Subulonia), ?Solva: 108

Ceratosolva Meijere, 1914: 102

elongatus (Osten Sacken), 1886 (Subula), Macroceromys: 107

flavicoxis (Enderlein), 1921 (Hanauia), ?Solva: 108

Formosolva James, 1939: 103

fulva Lindner, 1949, Arthropeina: 107

fulviventris Bigot, 1879, Macroceromys: 102

Hanauia Enderlein, 1920: 102

Macroceromys Bigot, 1877: 102

Nematoceropsis Pleske, 1925: 103

pallipes (Loew), 1863 (Subula), ?Solva: 108

Pararthropea Brunetti, 1920: 103

Phloophila Hull, 1944: 103

Prista Enderlein, 1913: 102

prista (Enderlein), 1913 (Xylomyia), Macroceromys: 107

Solva Walker, 1859: 103

Subula Meigen, 1820: 101

Subulaomyia Williston, 1896: 107

Subulonia Enderlein, 1913: 104

truncativena (Enderlein), 1913 (Subulonia), ?Solva: 107

Xylomya authors, not Rondani: 107

Xylomya Rondani, 1861: 102.

109

of the spermathecae in the abdomen; 2. Spermathecae an

122. Macroceromys pallidifemur (Malloch): 1. Situation

110

Phylogeny of the American genera of Solvidae: PAPAVERO, N. € J.N. ARTIGAS

FIGS. 3-4, Macroceromys simillimus (Steyskal): 3. Situation of the spermathecae in the abdomen; 4. Spermathecae and de-

tails.

111

spermathecal duct; 7. Spermathecae.

Ta AA

«00

Phylogeny of the American genera of Solvidae: PAPAVERO, N. 8 J.N. ARTIGAS

FiGs. 8-9. Arthropeina fulva Lindner: ituati ¡

nd peina fi indner: 8. Situation of the spermathecae in the abdomen; 9. Spermathecae and accessory

113

y M

ll MI

PO 1 y"

Gayana Zool. 55(2):115-137, 1991

ISSN 0016-531X

BRYOZOA MARINOS CHILENOS VII: NOTAS NOMENCLATURALES

SOBRE ESPECIES LITORALES 1

BRYOZOA MARINOS CHILENOS VII: NOMENCLATURAL NOTES ON

LITTORAL SPECIES I

Hugo I. Moyano G.*

RESUMEN

Con el objeto de contribuir a la estabilidad y claridad de la

nomenclatura taxonómica de las especies más comunes de

briozoos litorales chilenos se describen: 1) especies nuevas ori-

ginalmente propuestas en una tesis de 1969 y no descritas for-

malmente hasta ahora: Conopeum vivianii sp. n., Aplousina

decora sp. n., Lagenicella variabilis sp. n., Hippaliosina dor-

bignyana sp. n., Osthimosia armatissima sp. n. y Fenestruli-

na vivianii sp. n.; 2) se propone a A. paucivanna Sp. n., una

nueva especie recién descubierta del género Arachnopusia

hasta aquí desconocido en el litoral central y norte de Chile;

3) se revalida y redescribe a Fenestrulina cornuta d'Orbigny,

1847 confundida hasta ahora con F. malusii y 4) se comunica

el hallazgo en Chile central de las especies Microporella per-

sonata (Busk, 1854) y de Fenestrulina thyreophora (Busk,

1857).

PALABRAS CLAVES: Briozoos. Pacífico Sudoriental. Nuevas es-

pecies. Sistemática.

* Departamento de Zoología, Facultad de Ciencias

Biológicas y de Recursos Naturales, Universidad de Concep-

ción. Casilla 2407. Concepción. Chile.

115

ABSTRACT

In order to stabilize and clarify the taxonomic nomenclature

of the more common species of Bryozoa along the Chilean

marine littoral: 1) the following new species formerly

described in a 1969 thesis and until now undescribed are now

proposed: Conopeum vivianii sp. n., Aplousina decora sp. n.,

Lagenicella variabilis sp. n., Hippaliosina dorbignyana sp. n.,

Osthimosia armatissima sp. n. and Fenestrulina vivianiisp. n.;

2) A. paucivanna sp. n. a new species of the hitherto

unknown genus Arachnopusia in central and northern Chile

is also described; 3) Fenestrulina cornuta d'Orbigny, 1847,

until now confused with the so-called cosmopolite F. malusii

(Audouin) is revalidated and redescribed, and 4) two new

records of the subantarctic Microporella personata (Busk,

1854) and Fenestrulina thyreophora (Busk, 1857) to central

Chile are communicated.

KEYWORDS: Bryozoa. South Eastern Pacific. New species.

Systematics.

INTRODUCCION

El conocimiento de los briozoos chilenos de la

plataforma continental comienza antes de la mi-

tad del siglo XIX, con la publicación por parte de

d'Orbigny de los zoófitos recolectados por el Vo-

Gayana Zool. 55(2), 1991

yage dans l' Amerique Méridionale (1847). Allí se

describieron muchas especies comunes a lo largo

de la costa chilena tales como Membranipora isa-

belleana, Umbonula alvareziana y Terebripora

ramosa entre muchas otras. Posteriormente, las

diversas expediciones europeas que visitaron el

extremo sur de América del Sur a fines del siglo

pasado y comienzos de éste, desde las del Beagle,

Challenger, de la Romanche hasta diversas otras

subantárticas y antárticas añadieron muchas es-

pecies nuevas para la ciencia y para el extremo

sur de Chile. En la década de los sesenta y en la

siguiente se produce una reactivación de los estu-

dios briozoológicos chilenos, dándose a conocer

muchas especies nuevas o extendiéndose la distri-

bución de otras ya conocidas (Moyano, 1965,

1983; Viviani, 1969, 1977).

Y en la década de los ochenta se llega por

una parte a un buen conocimiento de los brio-

zoos de las islas oceánicas chilenas (Moyano,

1983), cuyo conocimiento había comenzado con

la briozoofauna de Juan Fernández por parte de

Marcus ya en 1921 y por otra, a nuevos descubri-

mientos de la fauna briozoológica chilena antárti-

ca y subantártica (Moyano, 1982, 1983; López-

Gappa, 1978, 1988; Hayward et al.,1988, 1990).

A pesar de lo dicho más arriba, aún persiste

un problema nomenclatural que afecta a un nú-

mero considerable de especies muy comunes a lo

largo del litoral de Chile central y norte. En 1969

Viviani dio a conocer en una tesis más de cin-

cuenta especies litorales chilenas, de las cuales

sobre un 30% eran propuestas como nuevas. De

éstas sólo las de la familia Hippothoidae fueron

formalmente descritas en 1977, constituyéndose

el resto en nomina illegitima. Con el objeto de re-

mediar este problema, en esta primera nota se

describen como nuevas aquéllas de las que el

autor posee material que puede ser designado co-

mo tipo, se redescriben otras muy comunes más

una nueva del género Arachnopusia que por pri-

mera vez aparece en Chile central.

DESCRIPCIONES SISTEMÁTICAS

Antes de describir las especies nuevas se expone

la Tabla I con la posición sistemática de las mis-

mas.

TABLA 1. Posición sistemática de especies nuevas y poco co-

nocidas de briozoos litorales de Chile central.

Orden CHEILOSTOMATA Busk, 1842.

Familia MEMBRANIPORIDAE Busk, 1854

l. Conopeum vivianii sp. n.

Familia HINCKSINIDAE Canu y Bassler, 1927

2. Aplousina decora sp. n.

Familia ARACHNOPUSIIDAE Jullien, 1888

3. Arachnopusia paucivanna Sp. n.

Familia PHYLACTELLIDAE Canu y Bassler, 1917

4. Lagenicella variabilis sp. n.

Familia CHEILOPORINIDAE Bassler, 1936

5. Hippaliosina dorbignyana Sp. n.

Familia CELLEPORIDAE Johnston, 1838

6. Osthimosia armatissima Sp. n.

Familia MICROPORELLIDAE Hincks, 1880

7. Fenestrulina cornuta (d'Orbigny, 1847)

8. Fenestrulina vivianii sp. n.

9. Fenestrulina thyreophora (Busk, 1857)

10. Microporella personata (Busk, 1854)

1. Conopeum vivianii sp. n.

Lám. I, AL, AD, MI

Conopeum seuratiformis Viviani, 1969; Nomen

illegitimum.

DIAGNOSIS.

Zoario incrustante, pluriserial y unilaminar, blan-

co amarillento a café claro. Zooides membranipo-

rinos, rectangulares a hexagonales; gimnocisto

casi inexistente, excepto en los rincones proxima-

les, con una espina quitinosa, cónica de color ca-

fé, en cada ángulo distal; criptocisto moderada-

mente desarrollado, de borde denticulado y con-

torno oval; pared frontal membranosa, extensa,

con un opérculo distal ancho, de borde engrosa-

do.

MATERIAL ESTUDIADO

Holotipo MZUC: Huapi, Lago Budi, 13/05/1987;

Col. Valdovinos. Paratipos MZUC: 21071,

Huapi, Lago Budi, 13/05/1987; Col. Vadovinos.

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

ETIMOLOGÍA

Especie dedicada a Carlos Viviani por su contri-

bución al conocimiento de la briozoofauna chile-

na.

OBSERVACIONES

Especie característica de sistemas costeros, es-

tuarinos y lacunares (sensu geologicum), donde

crece incrustando desde conchas a madera y ro-

cas.

DISTRIBUCIÓN

lloca a Chiloé (Viviani, 1969), Lago Budi de

acuerdo al material tipo.

2. Aplousina decora sp. n.

Lám. I, MD, ABI, ABD

Aplousina sanchezi Viviani, 1969; Nomen illegi-

timum.

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, multiserial, blan-

co sucio. Zooides ovalados, angostos, alargados,

separados por surcos profundos. Opesia ovalada

de borde distal redondeado y proximal subrecto a

arqueado. Criptocisto granuloso bastante de-

sarrollado proximalmente; gimnocisto de de-

sarrollo moderado especialmente en lado proxi-

mal y ocasionalmente con un umbo calcáreo ba-

jo. Sin avicularias ni espinas orales. Ovicela endo-

zoecial levemente desarrollada, con un umbo

central más o menos agudo.

MATERIAL ESTUDIADO:

Holotipo MZUC: 21072, Las Cruces, Chile

Central, 1990. col J. Cancino. Paratipos MZUC:

21073, Las Cruces, Chile Central, 1990. col. M.

Muñoz.

117

ETIMOLOGÍA

Nombre derivado del latín decorus = bello, ele-

gante.

OBSERVACIONES

Unica especie hasta aquí conocida de este género

en el litoral chileno, afín a A. gymnocystica de

Juan Fernández, de la que difiere por la menor

extensión del criptocisto y del gimnocisto (Moya-

no, 1983).

DISTRIBUCIÓN

Iquique a Maullín (Viviani, 1969). Común en

alrededores de la Bahía de Concepción.

3. Arachnopusia paucivanna sp. n.

Lám. II

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, multiserial, blan-

quecinoamarillento. Zooides de bordes indistin-

tos por el gran desarrollo del pericisto. Pericisto

completo, con un arco distal provisto de una pun-

ta central dirigida hacia arriba; parte central con

4-5 grandes agujeros resultantes del crecimiento

hacia el centro opesial de algunos procesos agu-

dos laterales y proximales. Abertura secundaria

con una sola espina de posición lateral y con una

avicularia triangular pequeña dirigida proximo-

lateralmente en el lado opuesto al de la espina.

Con una avicularia triangular, pequeña, dirigida

hacia arriba y distalmente ubicada en el centro

del arco pericístico distal; con otras avicularias

un poco mayores en el lado proximal del pericisto

de mandíbula triangular corta a semicircular.

Ovicela no observada.

MATERIAL ESTUDIADO

Holotipo MZUC: 21074, Las Cruces, Chile

Central, 1990. col. M. Muñoz. Paratipos MZUC:

21083, Las Cruces, Chile Central, 1990. col. M.

Muñoz.

Gayana Zool. 55(2), 1991

ETIMOLOGÍA

De los vocablos latinos paucus = poco y vannus

criba.

OBSERVACIONES

Esta es la primera especie del género que se ha

encontrado en el litoral de Chile central. Difiere

de la especies australes en el bajo número de agu-

jeros del pericisto y en la pequeñez de la avicula-

ria. Se diferencia A. paucivanna sp. n. de Arach-

nopusia areolata Moyano, 1983, presente en el

talud de Chile central, porque en ésta no hay es-

pinas orales y porque en aquélla no existen los

poros marginales que caracterizan y dan el

nombre a ésta. Semeja A. paucivanna sp. n. a A.

pusae Marcus del litoral brasileño en el bajo nú-

mero de agujeros del pericisto, pero se diferencia

de ella en que ésta carece de espinas orales y por

presentar dos avicularias lateroorales en vez de

una.

DISTRIBUCIÓN

Conocida sólo del locus typicus. Las Cruces en

Chile central.

4. Lagenicella variabilis sp. n.

Lám. 0H, MD, ABI, ABD

Lagenicella chilensis Viviani, 1969; Nomen illegi-

timum.

DIAGNOSIS

Zoario blanquecino a translúcido, generalmente

incrustante, unilaminar y pluriserial, pero tam-

bién ocasionalmente celeporiforme o irregular-

mente vinculariforme. Zooides desde aplastado-

ovalados hasta lageniformes, con peristoma poco

o muy desarrollado, generalmente bien calcifica-

dos de bordes poco notorios. Pared frontal tre-

mocística, densamente perforada, con poros mar-

ginales sólo un poco mayores que los centrales.

Con una avicularia a cada lado de la abertura se-

cundaria que forman la parte distolateral del pe-

118

ristoma, pequeñas (ca. 1/10 del diámetro apertu-

ral), columnares, de mandíbula triangular corta

dirigidas oblicuamente hacia los lados del zooide.

Ovicela hiperestomial —no inmersa, con un área

aplastada, densa y finamente perforada— de-

sarrollada en la parte posterior del peristoma.

MATERIAL ESTUDIADO

Holotipo MZUC: 21075, Las Cruces, Chile

central, 1990. col. J. Cancino. Paratipos MZUC:

21076, Las Cruces, Chile central, 1990. col. C.

Orellana.

ETIMOLOGÍA

Especie litoral cuyo nombre latino alude a su zo-

ario altamente variable en estructura según las

condiciones ambientales.

OBSERVACIONES

Esta especie incrusta rocas, conchas, algas y tam-

bién crece sobre sustratos artificiales. Al de-

sarrollarse sobre sustratos efímeros o de poca su-

perficie puede formar estructuras zoariales cele-

poriformes o vinculariformes como por ejemplo

sobre algas rodófitas filamentosas. Igualmente

variables son los zooides, pudiendo presentar un

peristoma poco o muy desarrollado. Es la única

del género Lagenicella presente en nuestras

aguas. Desde California a las Galápagos Osburn,

1952 señaló varias especies congenéricas de la

chilena, pero dentro del género Lagenipora.

DISTRIBUCIÓN

Especie sumamente común en el litoral desde

Iquique a Chiloé según Viviani (1969), que segu-

ramente se extiende hasta la costa peruana.

5. Hippaliosina dorbignyana sp. n.

Lám. III, Af, AD, MI.

Hippaliosina mollensis Viviani, 1969; Nomen

illegitimum.

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

DIAGNOSIS:

Colonia incrustante, unilaminar y multiserial.

Zooides blanquecinos muy calcificados, separa-

dos por surcos poco profundos, hexagonales, más

largos que anchos; con una sola fila de areolas

marginales grandes, separadas por elevaciones

calcáreas radiales que se originan o convergen en

un umbo suboral a veces muy desarrollado.

Abertura zoecial acampanada, más larga que

ancha, de póster más ancho que el ánter separa-

dos por un par de cardelas. Frecuentemente con

una avicularia pequeña, laterooral y de mandíbu-

la lingúiforme corta. Ovicela endozoecial, inmer-

sa y densamente perforada frontalmante.

MATERIAL ESTUDIADO

Holotipo MZUC: 21077, Las Cruces, Chile

central, 1990. col. M. Muñoz. Paratipos MZUC:

21078, Las Cruces, Chile central, 1990. col. C.

Orellana.

ETIMOLOGÍA

Especie dedicada a Alcide d'Orbigny (Voyage

dans P'Amérique Méridionale, 1839), primer

descriptor de briozoos litorales chilenos.

OBSERVACIONES

Especie que incrusta con gran frecuencia sustra-

tos duros como rocas y conchas. Normalmente

aparece muy calcificada, lo que se acentúa al pa-

recer en áreas de gran turbulencia formando

gruesas capas. Fácilmente distinguible si presenta

ovicelas; confundible con Cryptosula pallasiana

que presenta el mismo tipo de abertura (Moyano,

1965), la que en cambio presenta toda la pared

frontal perforada y con Umbonula alvareziana

por tener un umbo y costillas frontales semejan-

tes pero diferentes en el número, forma y orienta-

ción de las avicularias.

DISTRIBUCIÓN

De Iquique a Mehuín según Viviani (1969). Muy

común en Chile central y en Bahía de Concep-

ción y alrededores.

119

6. Osthimosia armatissima sp. n.

Lám. IV, AL, AD, MI, MD

Costazia multiavicularis Viviani, 1969; Nomen

illegitimum.

DIAGNOSIS

Zoario blanquecino, discoidal, convexo formado

de zooides vertical e irregularmente dispuestos en

cuanto a inclinación y orientación. Zooides urce-

olados, bien calcificados, con areolas marginales

y algunas frontales en dos o más círculos irregula-

res. Abertura zoecial primaria subcircular con un

amplio seno proximal en U. Abertura secundaria

al término de un peristoma grueso y ancho bor-

deada por uno, dos o más pares de avicularias de

mandíbula triangular corta y de dirección va-

riable. Con avicularias interzoeciales de tamaño

equivalente a un medio o dos tercios del tamaño

autozoecial, con mandíbulas triangulares cortas o

anchamente espatuladas. Ovicela hiperestomial,

globosa, con un área imperforada, ovaladoacora-

zonada provista de estrías radiales finas.

MATERIAL ESTUDIADO

Holotipo MZUC: 21079; Cerca de Dichato,

1989, Col. J. Cáceres. Paratipos MZUC: 21080;

Las Cruces, Chile central, 1990. col. M. Muñoz.

ETIMOLOGÍA

El nombre específico —que deriva del latín arma-

tissimum y que significa armado hasta los dien-

tes— se refiere a la gran cantidad de avicularias

epi e interzoeciales que la especie ostenta.

OBSERVACIONES

Especie fácilmente identificable y diferenciable

de todas las especies sybantárticas americanas y

antárticas del género Osthimosia, monografiadas

en parte por Rogick (1959) y Moyano 1974, por

la presencia normal de más de un par de avicula-

rias peristomianas.

Gayana Zool. 55(2), 1991

DISTRIBUCIÓN

De Coquimbo a Valdivia sobre diversos sustratos

vivos animales y vegetales según Viviani (1969).

Relativamente común sobre rocas sublitorales en

el área de Concepción según nuestras Observa-

ciones.

7. Fenestrulina cornuta (4'Orbigny, 1847)

Lam. V.

Escharina cornuta d'Orbigny, 1847: 13, lám. 3,

figs. 13-16.

Fenestrulina malusii (Audouin, 1826): Viviani,

1969: 133, figs. 74-76.

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, multiserial,

translúcido a blanquecino. Zooides muy conve-

xos, separados por surcos muy hondos, ovalados

a ovalado-circulares. Pared frontal con poros es-

telados con 4-5 rayos que dejan una pequeña

abertura central, distribuidos en una corrida mar-

ginal y otra entre el ascoporo y la abertura. Ásco-

poro semilunar montado en un umbo de bordes

levantados y expandidos, con una lengúeta (o es-

cutelo de origen distal) de borde libre muy denti-

culado, de pedicelo ancho, casi tan larga como

ancha que se opone al borde proximal muy denti-

culado del ascoporo. Abertura zoecial semicircu-

lar bordeada por 4 espinas gruesas. Ovicela hipe-

restomial, redondeada, hemisférica, con un re-

borde calcáreo basal y areolas marginales.

MATERIAL ESTUDIADO:

Varias colonias que incrustan madera, aluminio,

y otros sustratos naturales y artificiales, prove-

nientes tanto de Las Cruces en Chile central co-

mo del área de Dichato, 40 km. al norte de Con-

cepción.

OBSERVACIONES:

Especie común en el litoral en sustratos tanto na-

turales animales y vegetales como sobre sustratos

artificiales, madera, metales, vidrio. Confundible

120

con las otras dos especies comunes de las que di-

fiere por su menor tamaño, mayor convexidad,

mayor número de espinas orales (4 en vez de 2 y

0) y por presentar normalmente una sola fila de

poros entre el ascoporo y el borde proximal de la

abertura zoecial. Confundible también con la es-

pecie tipo F. malusii, de la que difiere en el núme-

ro de espinas orales (4 en vez de 2) y en presentar

una sola fila de poros entre la abertura y el asco-

poro. Aunque la descripción de d'Orbigny es

muy superficial, sus figuras claramente muestran

las 4 espinas características, el ascoporo realzado

y una sola fila de poros suborales.

DISTRIBUCIÓN

Muy común en Valparaiso sobre conchas de al-

mejas según d'Orbigny (1847). Arica a Chiloé se-

gún Viviani, 1969.

8. Fenestrulina vivianil sp. n.

Lám. VI

Fenestrulina intrusa Viviani, 1969; Nomen illegi-

timum.

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, multiserial, blan-

quecino. Zooides hexagonales, convexo-

aplastados, separados por surcos. Pared frontal

muy perforada por poros estelados provistos de

4-5 radios que convergen hacia un poro central,

que se presentan en dos o más corridas entre la

abertura y el ascoporo y que perforan práctica-

mente toda la pared frontal. Ascoporo semilunar

en un umbo bajo, con una lengúeta (o escutelo de

origen distal) de pedicelo angosto, un poco más

larga que ancha que se opone al borde proximal

denticulado del ascoporo. Abertura zoecial semi-

circular con sólo dos espinas distales, próximas,

pequeñas y caducas. Ovicela hiperestomial, re-

dondeada, hemisférica, con un reborde calcáreo

basal y areolas marginales que delimitan finas

costillas radiales.

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

MATERIAL ESTUDIADO

Holotipo MZUC: 21081, Las Cruces, Chile

central, 1990. col. M. Muñoz. Paratipos MZUC:

21082, Las Cruces, Chile central, 1990. col. M.

Muñoz.

ETIMOLOGÍA

Especie dedicada a Carlos Viviani, quien la des-

cubriera inicialmente.

OBSERVACIONES

Especie común en el litoral en sustratos tanto na-

turales animales y vegetales como sobre sustratos

artificiales, madera, metales, vidrio. Confundible

con las otras dos especies comunes, de las que di-

fiere por su mayor tamaño, menor convexidad,

diferente número de espinas orales (2 en vez de 4

y 0), por presentar dos o más filas de poros entre

el ascoporo y el borde proximal de la abertura zo-

ecial y por tener toda la pared frontal perforada.

Coincide con F. cornuta en poseer poros estrella-

dos de igual estructura, por lo que ambas difieren

en este carácter de F. thyreophora, que posee po-

ros cribados de estructura mucho más compleja.

DISTRIBUCIÓN:

Originalmente señalada para Coquimbo (Viviani,

1969) como epibionte de moluscos de los géneros

Chama y Crepidula, pero que también aparece

en otros sustratos. Presente en Las Cruces, Chile

central, y probablemente se halle al norte y sur

de ambas localidades.

9. Fenestrulina thyreophora (Busk, 1857)

Lám. VI

Lepralia thyreophora Busk, 1857:172.

Microporella malusii var. thyreophora: Mac-

Gillivray, 1889:275.

Fenestrulina chilensis Viviani, 1969, Nomen ille-

gitimum.

Fenestrulina malusii pulchra Gordon, 1984:107.

Fenestrulina pulchra: Moyano, 1985:86.

Fenestrulina thyreophora: Gordon, 1989:61.

121

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, multiserial, blan-

quecino. Zooides hexagonales, convexo-

aplastados, separados por surcos profundos. Pa-

red frontal perforada por áreas cribadas grandes

y complejísimas, que se presentan en una corrida

por todo el contorno zoecial y en una o dos corri-

das entre la abertura y el ascoporo y que dejan

una amplia área imperforada por el lado proxi-

mal del ascoporo. Ascoporo semilunar montado

en un umbo bajo, con una lengúeta (o escutelo de

origen distal) no denticulada de pedicelo angosto,

casi tres veces más ancha que larga que se opone

al borde proximal no denticulado del ascoporo.

Abertura zoecial semicircular sin espinas. Ovice-

la hiperestomial, redondeada, hemisférica, con

un reborde calcáreo basal y areolas marginales.

MATERIAL ESTUDIADO

Varias colonias que incrustan madera, aluminio,

y otros sustratos naturales y artificiales, prove-

nientes tanto de Las Cruces en Chile central co-

mo del área de Dichato, 40 km. al norte de Con-

cepción.

OBSERVACIONES:

Especie común en el litoral en sustratos tanto na-

turales animales y vegetales como sobre sustratos

artificiales, madera, metales, vidrio. Confundible

con las otras dos especies comunes, de las que di-

fiere por su tamaño, convexidad, por carecer de

espinas orales (0 en vez de 4 y 2) y por presentar

poros complejísimos cuya estructura recuerda el

círculo cribado que cierra la caja de resonancia

de los laudes.

Las microfotografías MEB (SEM) de los

ejemplares aquí estudiados concuerdan estrecha-

mente con las de los ejemplares de Juan Fernán-

dez (Moyano, 1985, lám. VIII, figs, 1-3) y del

área neozelandesa (Gordon, 1989: lám. 33, B-F)

con la excepción del poro supraapertural medio

distal claramente perceptible en las fotografías de

ejemplares de Juan Fernández y de Nueva Ze-

landia.

Gayana Zool. 55(2), 1991

DISTRIBUCIÓN

Tocopilla a Mehuín (Viviani, 1969). Común en

Chile central e intermezclada en los mismos

sustratos con las dos especies de este 'género.

10. Microporella personata (Busk, 1854)

Lám. IV, ABI, ABD

Lepralia personata Busk, 1854:74; lám. 90, figs.

2-4,

Microporella personata (Busk, 1854): Lopéz-

Gappa, 1978:49; Hayward y Ryland, 1990:1282,

Fig. 10 B.

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, pluriserial, blan-

quecino. Zooides hexagonales, bien calcificados.

Abertura zoecial subcircular de borde proximal

recto, rodeada disto-lateralmente por 4-6 espinas.

Ascoporo semicircular, con abertura en U de bor-

des fuertemente dentados. Con una avicularia su-

boral lateral que apunta oblicuamente hacia

afuera y arriba, relativamente grande, proximal-

mente redondeada y distalmente subtriangular

de bordes incurvados; mandíbula triangular larga

y angosta distalmente. Ovicela hiperestomial,

convexa, rodeada distal y lateralmente por 12-14

grandes areolas, que delimitan fuertes y notorias

costillas radiantes basales. Zooecias oviceladas

con un cuello calcáreo proximal a la abertura que

forma una especie de peristoma.

MATERIAL ESTUDIADO:

Una sola colonia incrustando una roca obtenida

a ca. 10 m. de profundidad, cerca de Coliumo,

Octava Región, Chile; 07/12/89, col. J. Cáceres.

OBSERVACIONES

Especie nueva para Chile. Sólo se ha encontrado

una colonia adulta y ovicelada en la localidad de

Las Negras al norte de la Bahía de Coliumo. Sin

embargo, no hay dudas sobre su identidad dada

la presencia de su muy característica ovicela, su

cuello ovicelar y avicularia suboral. El ejemplar

122

estudiado concuerda estrechamente también con

la figura que de la especie dan Hayward y

Ryland (1990:1282, fig. 10B)

DISTRIBUCIÓN

Magallanes, plataforma patagónica, Malvinas,

Isla Gough (Hayward y Ryland, 1990). Chile

Central según este trabajo.

DISCUSION

Casi todas las especies presentadas aquí se carac-

terizan por su abundancia y por formar parte im-

portante de las comunidades incrustantes de

sustratos variados, tanto del intermareal como

del infralitoral superior. Crecen normalmente

asociadas a poliquetos tubícolas, balánidos,

verrúcidos, ascidias crustosas e hidrozoos. Tam-

bién se hallan compartiendo los sustratos con las

diversas especies de Bryozoa Hippothoidae, espe-

cialmente Celleporella hyalina y de otras familias

como con Schizoporella bifrons, Umbonula alva-

reziana, Caulorhamphus spiniferum y menos co-

múnmente con los briozoos ciclóstomos Des-

meplagioecia irregularis y Disporella nanozoifera

(observaciones personales). Su conocimiento, así

como su identificación y situación nomenclatural

son imprescindibles para el ecólogo, ecofisiólogo,

zoogeógrafo o zoólogo que quieran trabajar con

los organismos coloniales más comunes de las

biotas litorales chilenas.

El género Arachnopusia propuesto por

Jullien en 1888 es característico de las aguas su-

bantárticas y antárticas, teniendo una distribu-

ción circummarina austral. Recientemente Hay-

ward y Thorpe (1988) pasaron revista a 18 espe-

cies, describiendo 11 nuevas de entre ellas. Tam-

bién indican que la mayor diversidad se en-

cuentra entre el Arco de Escocia y la región Ma-

gallánica. El número total de especies de este gé-

nero debe alcanzar a unas 25, ya que existen va-

rias en el área áustralo-neozelandesa (Gordón,

1984, 1989), más una en la costa brasileña (Mar-

cus, 1949) y otra en el talud de Chile central (Mo-

yano, 1983) y la nueva que aquí se describe. A.

paucivanna sp. n. difiere de todas las nuevas

descritas por Hayward y Thorpe por su bajísimo

número de perforaciones en el pericisto. Las úni-

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

cas comparables con ella son A. pusae Marcus,

1949 de Espiritu Santo al sur de Vitória, 35 m.

(Brasil) y probablemente Hiantopora laticella Ca-

nu y Bassler, 1929 de las Filipinas. De acuerdo a

las fotografías dadas por esos autores, esta última

pertenece más bien a Arachnopusia que a Hian-

topora. Si esto es correcto habría que decir que el

género Arachnopusia sobrepasa el Ecuador hacia

el norte en la región Indopacíifica. Cualquiera que

sea el caso, es llamativo que la nueva especie 4.

paucivanna se parezca más a otras especies de

aguas templadas o tropicales que a las magalláni-

cas o a la del talud. Esto podría interpretarse de

dos formas: que estas especies pertenezcan a un

linaje de distribución circummarina tropical-

subtropical o templada, o que el ambiente

templado induzca la formación de un menor nú-

mero de poros del pericisto. Los conocimientos

actuales sobre el género Arachnopusia no permi-

ten argumentar en favor o en contra de una u

otra de esas dos interpretaciones.

A diferencia de Arachnopusia el género Fe-

nestrulina tiene una distribución mundial y a se-

mejanza de él presenta varias especies en aguas

chilenas con una mayor diversidad en aguas su-

bantárticas (Hayward y Ryland, 1990). Como lo

señalan estos autores la especie tipo de Fenestru-

lina, F. malusii (Audouin), ha sido registrada en

casi cada punto de todo el reino marino incluyen-

do las áreas polares, pero el reexamen de los dife-

rentes registros más el estudio de las muestras

con microscopía electrónica revela que muchas

características aparentemente mínimas (forma y

situación del ascoporo, número y situación de las

espinas orales, etc.) permanecen constantes

dentro de poblaciones que pueden tener rangos

geográficos considerables definiendo una gran di-

versidad específica. Desde este punto de vista era

de esperar que la especie tipo no estuviera en la

costa chilena: el examen de diversas muestras de

Chile central más los trabajos de d'Orbigny

(1841-1847), Viviani (1969), Gordon (1989) y

Hayward y Ryland (1990) permite afirmar que

así es. A. d'Orbigny ya en 1847 había descrito a

Escharina cornuta que si bien se parece a F. ma-

lusii (Audouin, 1826) difiere claramente de ella

como se indicó más arriba, y que puede conside-

rarse como una especie válida y la primera de este

género descrita para aguas chilenas. Viviani

(1969), aunque consideró que la especie de d'Or-

bigny era un sinónimo junior de la especie de

Audouin, descubrió otras dos, una de las cuales

123

se describe aquí como nueva y la otra como F. thy

reophora (Busk, 1857). El que sean y son espe-

cies distintas y no subespecies se demuestra al

constatar que se sobreponen geográficamente,

pudiendo crecer las tres sobre un mismo sustrato

y a muy corta distancia o incluso tocarse O

sobrecrecerse.

Con exclusión de la Antártica, las especies

del género Fenestrulina propias de las aguas chi-

lenas americanas e insulares son las siguientes:

F. cornuta d'Orbigny, 1847, Chile norte y

central;

F. majuscula Hayward, 1980, Estrecho de Ma-

gallanes;

F. microstoma Moyano, 1983, talud de Chile

central;

F. horrida Moyano, 1985, Magallanes;

F. thyreophora (Busk, 1857) (como F. pulchra

Gordon, 1984: Moyano, 1985), Juan Fernán-

dez y Chile norte y central;

F. vivianii sp. n. Chile central y norte.

La presencia de Fenestrulina thyreophora a

lo largo de la costa chilena junto con aumentar el

número de las especies de briozoos del área viene

a agregar otra más a las que como Opaeophora

lepida, Cellaria humilis, Galeopsis pentagonus y

Brodiella longispinata (entre otras) conectan zoo-

geográficamente las riberas australes oriental y

occidental del Pacífico.

Junto a estas diversas especies del género

Fenestrulina aparecen otras del género Micropo-

rella aún insuficientemente estudiado en el país.

Dentro de las conocidas está Microporella hyade-

si Jullien, especie magallánica muy característica,

de grandes zoarios bilaminares contortos y enor-

mes ovicelas hemisféricas. Junto a ésta —aparen-

temente— está presente a lo largo de la costa su-

damericana chilena la especie Microporella ci-

liata, considerada cosmopolita como lo ha sido la

ya señalada Fenestrulina malusii. Por esta razón

es posible que haya que describir nuevas especies

de este género tanto para el país como para la

ciencia como se ha hecho con Fenestrulina. En

este sentido se ajusta el nuevo registro que aquí

se hace de Microporella personata.

Las especies Conopeum vivianii Sp. n.,

Aplousina decora sp. n., Lagenicella variabilis sp.

n. e Hippaliosina dorbignyana sp. n. se emparen-

tan con especies afines de las costas orientales del

Pacífico central y norte conectando zoogeográfi-

Gayana Zool. 55(2), 1991

camente a esas faunas con las de la costa chilena.

De éstas, C. vivianii es la única especie chilena

conocida que vive en aguas de salinidad variable,

hallándosele en aguas estuarinas y lacunares.

La familia Celleporidae está representada

en Chile casi exclusivamente por el género Osthi-

mosia. Una excepción la constituye la presencia

del género Celleporina con una especie en Juan

Fernández y otra en Pascua (Moyano, 1985). En

las regiones antártica y subantártica existen no

menos de 6 especies de Osthimosia: O. millepo-

roides, O. bicornis, O. eatonensis; O. granum, O.

magna y O. mamillata (Rogick, 1959; Moyano,

1974), ninguna de las cuales ha sido señalada más

al norte de Chiloé. Sin embargo, O. armatissima

Sp. n., que aquí se describe, viene a romper esta

situación, constituyéndose en la única especie de

la familia hasta ahora encontrada en la zona

central de Chile.

AGRADECIMIENTOS

El autor agradece a FONDECYT que a través

del Proyecto 616/89 ha financiado esta investiga-

ción. Al Dr. Juan Cancino, Cristina Orellana,

Mauricio Muñoz y su equipo de trabajo (Univer-

sidad Católica de Chile, Santiago), quienes entre-

garon al autor sustratos experimentales sumergi-

dos en Las Cruces, de los cuales proviene casi to-

do el material tipo. A la Srta. Julia Cáceres (Post-

grado en Zoología, Universidad de Concepción),

quien descubriera la mayoría de estas especies en

la zona de Concepción y en particular Micropo-

rella personata nueva para Chile. Al personal del

Laboratorio de Microscopía Electrónica de la

Universidad de Concepción por las microfotogra-

fías MEB.

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Manuscrito aceptado en marzo de 1991

124

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

125

Gayana Zool. 55(2), 1991

LAMINA L Conopeum vivianii sp. n. y Aplousina decora sp. n. (en página anterior).

Figs. Al, AD, MI. Conopeum vivianii sp. n.

Al, dos zooides que muestran el criptocisto angosto e irregularmente tuberculado. x 136. AD, parte distal de un zooide que

muestra en el lado derecho los poros de comunicación interzoeciales. x 124. MI, ángulo distal derecho del zooide izquierdo

de Al, con la base circular hueca de una espina y un tubérculo del criptocisto. x 1440.

Figs. MD, ABI, ABD. Aplousina decora sp. n.

MD, vista general de un trozo zoarial. x 28. ABI, dos zooides con la ovicela distal endozoecial y el criptocisto gruesamente

tuberculado y ensanchado proximalmente. x 102. ABD, vista de la ovicela. x 176.

ABREVIATURAS Al = arriba izquierda; AD = arriba derecha; MI = al medio izquierda; MD = al medio derecha; ABI =

abajo izquierda, ABD = abajo derecha. (Las mismas abreviaturas se usan en las otras láminas).

LAMINA II. Arachnopusia paucivanna sp. N.

Al, vista general de un trozo del zoario incrustante. x 10. AD, zooide adulto sólo con tres grandes perforaciones frontales,

de las que la inferior aparentemente se está dividiendo en dos; en el lado izquierdo de la abertura hay una avicularia pe-

queña dirigida próximo-lateralmente, otra por el lado proximal de la abertura apuntando hacia arriba; en el lado derecho y

opuesta a la avicularia látero- proximal hay una gruesa espina vertical, aquí truncada. x 104. MÍ, zooide con tres aberturas

frontales casi completamente separadas. x 104. MD, zooide formando 4 aberturas frontales. x 104. ABI, zooide juvenil con

el área frontal aún completamente abierta, de cuyos bordes internos se están formando procesos que la dividirán. x 104.

ABD, área apertural del zooide de MI. Nótese en el lado izquierdo el esbozo de avicularia, dos espinas distal, de las que la

derecha se proyecta claramente y en el lado derecho la base de la gran espina apertural látero-proximal. x 208.

126

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

127

Gayana Zool. 55(2), 1991

LAMINA III. Hippaliosina dorbignyana sp. n. y Lagenicella variabilis sp. n.

Figs. Al, AD, MI. Hippaliosina dorbignyana sp. n.

Al, zooides, con una y dos avicularias látero-orales proximales. x 62. AD, zooide juvenil que muestra los grandes poros are-

olares marginales que delimitan costillas y la abertura con dos cóndilos proximales que la dividen en un ánter distal hemis-

férico y un ancho póster proximal arqueado. x 92. MI, área apertural. x 150.

Figs. MD, ABI, ABD. Lagenicella variabilis sp. n.

MD, vista general de un zoario ovicelado. x 24. ABI, zooides con el área apertural en forma de cuello con las dos avicula-

rias látero-orales sobresalientes y dirigidas oblicua y látero-proximalmente. x 80. ABD, zooide con la ovicela hiperestomial

provista de una tábula crescéntica densamente perforada. x 141.

128

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

129

Gayana Zool. 55(2), 1991

LAMINA IV. Osthimosia armatissima sp. n. y Microporella personata (Busk, 1854).

Figs, AI, AD, MI, MD. Osthimosia armatissima Sp. n.

Al, vista general mostrando los zooides erguidos. x 36. AD, avicularia interzoecial. x 136. MI, ancéstrula mirada desde el

lado proximal, nótese que por dentro del área frontal, limitada proximalmente por las bases de tres espinas, se eleva el pri-

mer zooide funcional. x 160. MD, vista de un zooide ovicelado; la parte proximal de la ovicela está rota, se nota sin embar-

go, la tábula y su área interna imperforada que caracteriza al género Osthimosia. Nótese también la presencia de 4 avicula-

rias en el borde peristomial. x 176.

Figs. ABI, ABD. Microporella personata (Busk, 1854).

ABI, zooides con ovicelas formadas y en formación, que muestran la avicularia lateral junto al ascoporo. x 48. ABD, zo-

oide ovicelado, que exhibe la gran ovicela provista de muy grandes poros marginales que delimitan costillas; también se ve,

al igual que en la lámina precedente, el collar peristomiano proximal de los zooides ovicelados. x 96.

130

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

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LÁMINA V. Fenestrulina cornuta (d'Orbigny, 1847)

Al, zooide inmaduro más ancho que largo. x 124. AD, zooide inmaduro más largo que ancho. x 124. MI, mitad zoecial dis-

tal mostrando la abertura y el ascoporo. x 232. MD, abertura mostrando las bases de las 4 espinas orales que caracterizan a

esta especie más la estructura de los tres poros interespinales. x 352. ABI, ascoporo. x 528. ABD, zooides ovicelados que

conservan sólo dos espinas orales. x 92.

132

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

A fe

: AO]

a o

133

Gayana Zool. 55(2), 1991

LAMINA VI. Fenestrulina vivianii sp. n.

Al, trozo zoarial ovicelado. x 36. AD, zooide ovicelado con la pared frontal completamente perforada. x 97. MI, zooides no

ovicelados con la pared frontal densamente perforada. x 88. MD, área apertural con las bases de las dos espinas distal pró-

ximas. x 240. ABI, ascoporo. x 800. ABD, poro estrellado. x 1600.

134

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

EQ»

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Gayana Zool. 55(2), 1991

LAMINA VII. Fenestrulina thyreophora (Busk, 1857).

Al, zooides ovicelados y no ovicelados. x 88. AD, ovicela hiperestomial. x 144. MI, área entre el borde proximal de la aber-

tura y el ascoporo mostrando dos corridas de poros cribados. x 352. MD, detalle de un poro cribado. x 1200. ABI, área

apertural con una sola área perforada distal crescéntica. x 240. ABD, área apertural con dos áreas perforadas. x 224,

136

Briozoos litorales chilenos: MOYANO, H.I.

Ea,

50 1% >

peo 24

137

Gayana Zool. 55(2):139-144, 1991

ISSN 0016-531X

THE AMERICAN GENERA OF ASILIDAE (DIPTERA): KEYS FOR

IDENTIFICATION WITH AN ATLAS OF FEMALE SPERMATHECAE

AND OTHER MORPHOLOGICAL DETAILS. VII.1. SUBFAMILY

STENOPOGONINAE HULL. A PRELIMINARY CLASSIFICATION

INTO TRIBES*

LOS GENEROS AMERICANOS DE ASILIDAE (DIPTERA): CLA VES

PARA SU IDENTIFICACION CON UN ATLAS DE LAS

ESPERMATECAS DE LAS HEMBRAS Y OTROS DETALLES

MORFOLOGICOS. VII.1. SUBFAMILIA STENOPOGONINAE HULL.

UNA CLASIFICACIÓN PRELIMINAR EN TRIBUS

Jorge N. Artigas** S£ Nelson Papavero***

ABSTRACT

The American genera of Stenopogoninae Hull (Diptera,

Asilidae) are typologically arranged into 12 tribes:

Acronychini, new (1 genus), Bathypogonini, new (l new

genus), Ceraturgini, new (2 genera), Cyrtopogonini, new (21

genera, 4 of which new), Dioctriini Hull, 1962 (2 genera),

Echthodopini Adisoemarto £« Wood, 1975 (5 genera),

Enigmomorphini Hull, 1962 (14 genera, 3 of which new),

Phellini Hull, 1962 (1 genus), Plesiommatini, new (3 genera),

Stenopogonini Hull, 1962 (3 genera), Tillobromini, new (7

genera, 3 of which new) and Willistoninini, new (1 genus).

KEYWORDS: Insecta. Taxonomy. America. Key. Asilidae. Ste-

nopogoninae. Tribes.

“This research was supported by the Fundagao de Ampa-

ro á Pesquisa do Estado de Sáo Paulo (FAPESP, Grants

85/1772-5, 86/3327-1 and 87/3170-8).

** Departamento de Zoología, Facultad de Ciencias Bioló-

gicas y de Recursos Naturales. Universidad de Concepción.

Proyecto Dirección de Investigación, Universidad de Concep-

ción, N” 203812.

*** Museu de Zoologia $ Instituto de Estudos Avangados,

Universidade de Sáo Paulo. Researcher of the Conselho Na-

cional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq,

Proc. 30.0994/79).

139

RESUMEN

Los géneros americanos de Stenopogoninae Hull (Diptera,

Asilidae) son tipológicamente organizados en 12 tribus:

Acronychini, nueva (1 género), Bathypogonini, nueva (1 gé-

nero nuevo), Ceraturgini, nueva (2 géneros), Cyrtopogonini,

nueva (21 géneros, 4 de los cuales son nuevos), Dioctriini

Hull, 1962 (2 géneros), Echthodopini Adisoemarto £ Wood,

1975 (5 géneros), Enigmomorphini Hull, 1962 (14 géneros, 3

de los cuales son nuevos), Phellini Hull, 1962 (1 género), Ple-

siommatini, nueva (3 géneros), Stenopogonini Hull, 1962 (3

géneros), Tillobromini, nueva (7 géneros, 3 de los cuales son

nuevos) y Willistoninini, nueva (1 género).

PALABRAS CLAVES: Insecta. Taxonomía. América. Clave.

Asilidae. Stenopogoninae. Tribus.

INTRODUCTION

This is part VIL1. of a series of papers intended

as a preliminary effort to define the American ge-

nera of Asilidae, describing the new genera, pre-

paratory to the elaboration of the catalogue of

Neotropical species for inclusion in the projected

World Catalog of Flies, now being prepared by

Gayana Zool. 55(2), 1991

the U.S. Department of Agriculture and the U.S.

National Museum of Natural History, Washing-

ton; D.C.

Part I (Leptogastrinae) was published in Ga-

yana, Zool. 52 (1-2): 95-114, 1988. Part II (Dasy-

pogoninae) in Gayana, Zool. 52 (3-4): 199-260,

1988. Part IMM (Trigonomiminae) in Bol. Soc.

Biol. Concepción, Chile 60: 35:41, 1989. Part IV

(Laphriinae) in Bol. Mus. paraense Emilio Goel-

di, Zool. 4 (2): 211-255, 1989. Part V (Stichopo-

goninae) in Bol. Soc. Biol. Concepción 61: 39-47,

1990. Part VI (Laphriinae (Atomosiini)) in Gaya-

na. Zool. 55 (1): 53-85, 1991.

Our best thanks to the Fundagao de Am-

paro a Pesquisa do Estado de Sáo Paulo and to

the Conselho Nacional de Desenvolvimento

Científico e Tecnológico (CNPq), and to the Di-

rección de Investigación de la Universidad de

Concepción, Chile. Without their generous sup-

port this research could not have been underta-

ken.

KEY TO TRIBES:

MATERIALS AND METHODS

The material used in this series belongs to the

Museu de Zoologia da Universidade de Sáo

Paulo, Brasil, and to the Departamento de Zoolo-

gía, Universidad de Concepción, Chile (MZUC).

The methodology employed in the dissece

tion and preservation of the male terminalia, fe-

male spermathecae and other morphological

parts is the same employed by Artigas (1971).

PRELIMINARY REMARKS AND KEY TO TRIBES

The Stenopogoninae are an artificial group, ba-

sed solely on symplesiomorphies. Much remains

to be done in this group. In order to facilitate

identification, we are herein organizing this

highly heterogeneous assemblage of genera into

12 tribes, accepting those previously proposed.

This new arrangement is merely a matter of con-

venience - some of the tribes proposed are appa-

rently monophyletic; others are simply aggrega-

tes of genera artificiously united.

l. Face extremely narrow. Head, in frontal view, clearly circular and notoriously narrower

than thorax. Second and third flagellomeres present or absent. Female terminalia

with acanthophorites present or absent

Face normally wider (if somewhat narrow, then triangular, as in Plesiommatini and

Acronichini) and head never circular and narrower than thorax

2(1). Antenna with 3 flagellomeres

Antenna with 1 or 2 flagellomeres

3(2). Cell m, extremely wide, over twice as wide as high.Large flies (25-35 mm). Face gra-

dually sloping from antennae to oral margin. Proboscis very long and slender,

much longer than length of bristles of mystax or height of face. Occiput entirely

covered with dense bristles and bristle-like hairs. Wings slightly longer than abdo-

men. Humeri with several strong bristles. Femora slender. Pleura pilose, espe-

cially above coxae

BATHYPOGONINI, new

Cell m, distinctly trapezoidal, higher than wide. Medium to small-sized flies. Other

combination of characters

The American genera of Asilidae, the Stenopogoninae: ARTIGAS, J.N. 8: N. PAPAVERO

4(3). Antennal stylus very robust, pubescent, as wide as or wider than first flagellomere

A A O O CERATURGINI. new

5(4). Face, in frontal view, distinctly triangular ........o..cconnnnn.n...... PLESIOMMATINI, new

Face never triangularin frontal VieWS'..0ooocociiocncociocncanicnioianicss CYRTOPOGONINL, new

6(2). Veins CuA; and My ending separately at wing margin (i. e., cell m3 open) (if cell my clo-

sed, veins CuA, and My meet only at wing margin, or, as in Zabrotica Hull, se-

cond flagellomere broad and thick, fused or absent and vertex unescavated). First

flagellomere normally without small bristles on lower dorsal surface. Second fla-

gellomere present or absent. Cell r, open

Veins CuA¡ and My fused before wing margin (i. e., cell m3 closed and petiolate). First fla-

gellomere normally with small bristles on lower dorsal surface. Cell r, open or clo-

SE A A a A A

7(6). Pulvilli and empodium absent. Proboscis thick, blunt and rounded at apex. Face trian-

gular in frontal view, more or less short, due to the great height of oral margin.

Frons narrowing towards apex, upper margin of eyes separated by a very short

dIStancoBO APO ACRONYCHINI, new

Pulvilli and empodium present (if pulvilli absent, never with the other characters above).

Other combinations of characters

8(7). Face extremely narrow, the antennal sockets occupying the full width of face. Frons

and vertex greatly expanded, Stichopogon-like. First flagellomere ovoid., 1.5-2 ti-

mes width of pedicel. Mystax compact, restricted to oral margin. Two to four

postsutural dorsocentral bristlesS ...........oo.ocono.ioonco....... WILLISTONININI, new

Face never as above. Other combinations Of Characters .....o.oonncccocioncononnonononanconicconononiccnninons

9(8). Second flagellomere sometimes fused to first flagellomere or second flagellomere enti-

O A O lat TILLOBROMINI, new

Second flagellomere transverse, spoon-shaped, thick and hairy

10(9). Ry ending behind wing tip. Alula absent. Ocellar tubercle without strong bristles. Hind

femur club-shaped, abruptly enlarged apically. Hind metatarsus conspicuously

enlarged, at least as long as subsequent three tarsomeres. Apex of proboscis poin-

ted, opening between labella dorsal and subapical, hypopharynx protruded above

and slightly proximad at apex; labella without subapical notch; prementum shor-

ter than labella, with sparse pile restricted to apex. ...... DIOCTRIINI Hull, 1962.

141

Gayana Zool. 55(2), 1991

Ry ending before wing tip. Alula present. Ocellar tubercle with long hairs or bristles

curving forward. Hind femur thickened subbasally, or at middle, or gradually

enlarged apically. Hind metatarsus shorter than three subsequent tarsomeres.

Apex of proboscis rounded, opening terminal; labella with subapical notch; pre-

mentum as long as or longer than labella, with abundant pile on entire surface

O A ECHTHODOPINI Adisoemarto € Wood, 1975

11(6). Stump of vein “R y” (reactivation of Ry field) present. Extremely pilose flies resembling

bumble-bees. Female ovipositor uniquely shaped, forming a long and thin tube de-

VOLOL MES ra PHELLINT Hull, 1962.

Stump of “Ry” absent. Never extremely pilose flies. Female ovipositor with spines on

acanthophontes e ao. ol ENIGMOMORPHINI Hull, 1962

LIST OF TRIBES AND GENERA OF AMERICAN

STENOPOGONINAE

1. Tribe Acronychini, new 6. Tribe Echthodopini Adisoemarto £ Wood,

Acronyches Williston, 1908 1975.

Bohartia Hull, 1958

Dicolonus Loew, 1866

One new genus from Argentina. Includes Echthodopa Loew, 1866

also Bathypogon Loew, 1851, from Eudioctria Wilcox 8 Martin, 1941

Australia. Metadioctria Wilcox £ Martin, 1941

2. Tribe Bathypogonini, new

7. Tribe Enigmomorphini Hull, 1962

Alyssomya Hull, 1962

Archilestris Loew, 1874

Aymarasilus Artigas, 1974

Creolestes Hull, 1962

3. Tribe Ceraturgini, new

Ceraturgus Wiedemann, 1824

Myelaphus Bigot, 1882

4. Tribe Cyrtopogonini, new

Ablautus Loew, 1866

Backomyia Wilcox 8: Martin, 1957

Callinicus Loew, 1872

Cyrtopogon Loew, 1847

Dasycyrton Philippi, 1865

Dasypecus Philippi, 1865

Eucyrtopogon Curran, 1923

Graptostylus Hull, 1962

Hadrokolos Martin, 1959

Heteropogon Loew, 1847

Itolia Wilcox, 1936

Metapogon Coquillett, 1904

Nannocyrtopogon Wilcox € Martin,

1936.

Pritchardomyia Wilcox, 1965

Sintoria Hull, 1962

Wilcoxia James, 1941

Cylicomera Lynch Arribálzaga, 1881

Diocranus Loew, 1851

Enigmomorphus Hermann, 1912

Leptochelina Artigas, 1970

Microstylum Macquart, 1838

Pritchardia Stuardo, 1946

Prolepsis Walker, 1851

Plus 3 new neotropical genera.

8. Tribe Phellini Hull, 1962

Obelophorus Schiner, 1866

9. Tribe Plesiommatini, new

Cystoprosopa Hull, 1962

Dapsilochaetus Hull, 1962

Plesiomma Macquart, 1838

10. Tribe Stenopogonini Hull, 1962

Ospriocerus Loew, 1866

Scleropogon Loew, 1866

Stenopogon Loew, 1847

Plus 4 new neotropical genera.

5. Tribe Dioctriini Hull, 1962

Dioctria Meigen, 1803

Nannodioctria Wilcox 8 Martin, 1942

142

The American genera of Asilidae, the Stenopogoninae: ARTIGAS, J.N. € N. PAPAVERO

11. Tribe Tillobromini, new

Coleomya Wilcox 8: Martin, 1935

Euthrixius Artigas, 1971

Tillobroma Hull, 1962

Zabrotica Hull, 1958

Plus 3 new neotropical genera.

12. Tribe Willistoninini, new

Willistonina Back, 1909

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Manuscrito aceptado en marzo de 1991

143

Gayana Zool. 55(2), 1991

Ablautus Loew, 1866: 142

Acronychini, trib. nov.: 147

Acronyches Williston, 1908: 142

Alyssomyia Hull, 1962: 142

Archilestris Loew, 1874: 142

Aymarasilus Artigas, 1974: 142

Backomyia Wilcox € Martin, 1957: 142

Bathypogonini, trib. nov. 142

Bohartia Hull, 1958: 142

Callinicus Loew, 1872: 142

Ceraturgini, trib. nov.: 142

Ceraturgus Wiedemann, 1824: 142

Coleomyia Wilcox $ Martin, 1935: 143

Creolestes Hull, 1962: 142

Cylicomera Lynch Arribálzaga, 1881: 142

Cyrtopogon Loew, 1847: 142

Cyrtopogonini, trib. nov.: 142

Cystoprosopa Hull, 1962: 142

Dapsilochaetus Hull, 1962: 142

Dasycyrton Philippi, 1865: 142

Desypecus Philippi, 1865: 142

Dicolonus Loew, 1866: 142

Dicranus Loew, 1851: 142

Dioctria Meigen, 1803: 142

Dioctriini Hull, 1962: 141

Echthodopa Loew, 1866: 142

Echthodopini Adisoemarto € Wood, 1975: 142

Enigmomorphini: 142

Enigmomorphus Hermann, 1912: 142

Eucyrtopogon Curran, 1923: 142

Eudioctria Wilcox € Martin, 1941: 142

Euthrixius Artigas, 1971: 143

Graptostylus Hull, 1962: 142

INDEX

144

Hadrokolos Martin, 1959: 142

Heteropogon Loew, 1847: 142

Itolia Wilcox, 1936: 142

Leptochelina Artigas, 1970: 142

Metadioctria Wilcox $ Martin, 1941: 142

Metapogon Coquillett, 1904: 142

Microstylum Macquart, 1838: 142

Myelaphus Bigot, 1882: 142

Nannocyrtopogon Wilcox $ Martin, 1936: 142

Nannodioctria Wilcox $ Martin, 1942: 142

Obelophorus Schiner, 1866: 142

Ospriocerus Loew, 1866: 142

Phellini Hull, 1962: 142

Plesiomma Macquart, 1838: 142

Plesiommatini, trib. nov.: 142

Pritchardia Stuardo, 1946: 142

Pritchardomyia Wilcox, 1965: 142

Prolepsis Walker, 1851: 142

Scleropogon Loew, 1866: 142

Sintoria Hull, 1962: 142

Stenopogon Loew, 1847: 142

Stenopogonini Hull, 1962: 140

Tillobroma Hull, 1962: 143

Tillobromini, trib. nov.: 143

Wilcoxia James, 1941: 142

Willistonina Back, 1909: 143

Willistoninini, trib. nov.: 143

Zabrotica Hull, 1958: 143

Gayana Zool. 55(2):145-199, 1991

ISSN 0016-531X

REVISION Y FILOGENIA DEL GENERO P4ACHROPH YLLA

BLANCHARD, 1852 (SENSU AUCTORUM) (GEOMETRIDAE:

LARENTIINAE: TRICHOPTERYGINT?*

REVISION AND PHYLOGENY OF THE GENUS PACHROPHYLLA

BLANCHAROD, 1852 (SENSU AUCTORUM) (GEOMETRIDAE:

LARENTIINAE: TRICHOPTER Y GINI)

Luis E. Parra**

RESUMEN

Se revisan las especies chilenas colocadas previamente en el

género Pachrophylla Blanchard, 1852. Pachrophylla es rede-

finido y redescrito y Butleriana, Fueguina, Parapachrophylla

y Warrenaria son descritos como géneros nuevos de acuerdo

al análisis filogenético realizado. Las siguientes nuevas com-

binaciones y especies son propuestas: Butleriana fasciata

(Butler) n. comb., B. fumosa (Butler) n. comb., B. minor

(Butler) n. comb. y B. oculata (Mabille) n. comb.; Fueguina

celovalva n. sp. y F. varians (Butler) n. comb.; Parapachro-

phylla caliginosa n. sp. y P. claudiae n. sp., y Warrenaria

martha (Butler) n. comb. Pachrophylla linearia Blanchard es

redescrita en base a la hembra y al macho, hasta ahora

desconocido.

Los géneros están distribuidos desde la Segunda (24" 29"

S) a la Duodécima Región de Chile (55% 31” S), siendo Butle-

riana n. gen. el de más amplia distribución y éste junto con

Fueguina n. gen. son los que alcanzan el extremo austral del

pais.

* Trabajo financiado por el Proyecto 20.38.14 de la Di-

rección de Investigación de la Universidad de Concepción.

** Depto. de Zoología, Universidad de Concepción, Ca-

silla 2407-10, Concepción, Chile.

El análisis filogenético demuestra que el grupo de géne-

ros del complejo Pachrophylla estudiado es monofilético,

entre los cuales Fueguina n. gen. es el más plesiomórfico y

Butleriana n. gen. es el más apomórfico.

Se describen los estados inmaduros de P. claudiae n. sp.,

dando a conocer su hospedador. Se entregan claves para la

identificación de los géneros y especies, las cuales se basan en:

maculación alar, genitalia del macho y hembra. Se ¡ilustran

los caracteres de los adultos e inmaduros y la distribución de

las especies encontradas.

PALABRAS CLAVES: Lepidoptera, Geometridae, Larentinae,

Trichopterygini, Pachrophylla, Filogenia, Sistemática, Chile.

ABSTRACT

The Chilean species of the genus Pachrophylla Blanchard,

1852 are revised. Pachrophylla is redefined and redescribed.

Butleriana, Fueguina, Parapachrophylla and Warrenaria

based on the phylogenetic analysis, are described as new

genera.

Butleriana fasciata (Butler) n. comb., B. fumosa (Butler)

n. comb., B. minor (Butler) n. comb. and B. oculata (Mabille)

n. comb.; Parapachrophylla caliginosa n. sp. and P. claudiae

n. sp. and Warrenaria martha (Butler) n. comb. are proposed.

Pachrophylla linearia Blanchard is redescribed, based on the

genitalia of both female and male. This last one was unknow

up to date.

The geographical distribution of the genera is between

the Second (24% 29 S) and Twelfth Region (55% 31” S) in

Gayana Zool. 55(2), 1991

Chile: Butleriana n. gen. shows the widest distribution In

Chile and together with Fueguina n. gen. reach the southern

part of Chile.

The phylogenetic analysis shows that the studied group

of genera of the Pachrophylla complex is monophyletic.

Among them, Fueguina n. gen. is the most plesiomorphic

and Butleriana n. gen. is the most apomorphic.

The immature instars of P. claudiae n. sp. are described

INTRODUCCION

La familia Geometridae está conformada por seis

subfamilias basadas principalmente en la nerva-

dura alar (Forbes, 1948; Fletcher, 1979; Angulo

y Casanueva, 1981). De éstas, Ennominae y La-

rentiinae son las más numerosas, constituyendo

alrededor del 70-75% de la fauna Neotropical pa-

ra la familia Geometridae. Para estas dos subfa-

milias la información existente en Chile es disí-

mil, siendo Ennominae la más conocida gracias

al intenso trabajo desarrollado por Rindge duran-

te los años 1971 y 1983 principalmente. Para los

Larentiinae, la situación es diferente, la cantidad

de información existente es reducida y se limita

sólo al conocimiento que dejaron naturalistas co-

mo Blanchard, Butler y otros. Según Angulo y

Casanueva (1981), la subfamilia está compuesta

en Chile por 35 géneros con 87 especies; de éstos,

sólo Eupithecia ha sido estudiado recientemente

(Rindge 1987), quien aclara la situación sistemá-

tica.

Los Larentiinae fueron divididos por

Warren (1894) en seis grupos de rango subfami-

liar y en ocho tribus por Forbes (1948); entre es-

tos grupos, los Trychopterygini Warren, 1894

(Prout, 1912) (= Lobophorini de Forbes op cit.)

se distinguen por la presencia de un lóbulo en la

base del ala posterior del macho (Prout, 1912) y

por su amplia distribución mundial, la cual está

representada en todas las regiones faunísticas, a

excepción del Pacífico Oriental (Dugdale, 1980).

En Chile, la tribu Trichopterygini no ha sido

reconocida como tal, pero hay géneros y especies

que tienen las características propias de ella y que

han sido incluidos en la subfamilia, sin especificar

ninguna tribu en particular. Los géneros presen-

tes en Chile, hasta la fecha son: Rhopalodes

Guenée, 1857; Tomopteryx Philippi, 1873; Trip-

tila Warren, 1894; Isosauris Warren, 1894; To-

xopaltes Warren, 1894; y Pachrophylla

Blanchard, 1852. De éstos, el género Pachro-

146

and the host 1s specified. Identifications keys for the genera

and species are given, based mainly on: wing pattern, male

and famale genitalia. The features of the imagoes and

immatures and the distribution of the species are given.

KEYWORDS: Lepidoptera, Geometridae, Larentiinae,

Trichopterygini, Pachrophylla. Phylogeny, Systematic,

Chile.

phylla es indicado como exclusivo de Chile por

Prout (1910). Fue inicialmente descrito por

Blanchard (1852) sobre la base de una hembra y

luego se le adscribieron las especies: P. minor

Butler con tres subespecies; P. varians Butler y P.

oculata (Mabille) sensu Prout (1910); en todas es-

tas especies el macho presenta un lóbulo en las

alas posteriores, característica no indicada para el

género en la descripción original realizada por

Blanchard (op. cit.), debido al desconocimiento

del macho.

Dadas las características de la tribu Trichop-

terygini, probablemente se incorporaron las espe-

cies de Butler y Mabille erradamente al género

Pachrophylla, lo que de alguna manera produce

incertidumbre sobre el estatus sistemático actual

de las especies en conflicto, sugiriéndose un estu-

dio de cada una de ellas para aclarar su situación.

Por lo anteriormente expuesto, los objetivos

planteados para resolver el presente problema

son: a) establecer el estatus taxonómico del géne-

ro Pachrophylla Blanchard y de las especies que

se le han asignado y/o que están relacionadas; b)

establecer las relaciones filogenéticas entre los ta-

xa involucrados, dada la posibilidad de un origen

monofilético; c) conocer la distribución de los ta-

xa en Chile; y, d) construir claves, basadas en la

maculación alar, en la genitalia del macho y de la

hembra, que permitan la identificación de las es-

pecies.

MATERIALES Y METODOS

a) OBTENCIÓN DE LAS MUESTRAS

Los ejemplares utilizados en el presente estudio

provienen de diferentes museos, colecciones pri-

vadas y de recolección en terreno. Las institu-

ciones y personas que facilitaron material ento-

mológico son: Museo Nacional de Historia Natu-

ral, Santiago, Chile (MNHN); Museo de Zoolo-

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

gía de la Universidad de Concepción, Concep-

ción, Chile (MZUC); British Museum (Natural

History), Londres, Inglaterra (BMNH); y, Mu-

séum National d'Histoire Naturelle, Paris, Fran-

cia (MNHNP); Sr. Ernesto Krahmer, Valdivia

(EK) y Sr. Miguel Cerda, Santiago (MC). Las re-

colecciones en terreno fueron escasas y casuales;

se desarrollaron principalmente en Concepción y

sus alrededores, Cordillera de Nahuelbuta, Fun-

do Jauja (Prov. Cautín), Isla Guarello y extremo

norte del país. Los datos del material examinado

fueron tomados directamente de las etiquetas de

cada ejemplar.

b) ESTUDIO SISTEMÁTICO

La descripción de los géneros y especies fue

hecha sobre la base de: venación alar; macula-

ción de la cabeza, tórax (alas, patas, etc.) y abdo-

men; estructura de la armadura genital del

macho y de la hembra (cuando corresponde).

C) PREPARACIÓN ALAR (TÉCNICA DE MONTAJE Y DESCAMADO)

Se desprendieron las alas del lado derecho del

cuerpo, cuidadosamente para no romper la cone-

xión entre el primer y segundo par de alas, se su-

mergieron en alcohol 95% para humedecerlas y

luego fueron traspasadas a HCl 10%, por unos

pocos segundos. Posteriormente, se dejaron en

solución Labarraque hasta que el color (escamas)

fue removido. Enseguida se lavaron en agua para

sacar el blanqueador y, finalmente, montadas

entre dos portaobjetos que fueron debidamente

etiquetados.

d) PREPARACIÓN DE GENITALIA

A cada ejemplar examinado se le desprendió el

abdomen, el cual se dejó remojar por un instante

en alcohol etílico 70% w/v (1-2 minutos); luego

se colocó en KOH 10% w/v y dejado en baño

María (para acelerar el proceso) por un periodo

de 10 minutos. El alcohol es una etapa previa pa-

ra acelerar la velocidad de impregnación del

KOH, éste se utiliza para aclarar y ablandar el

material. Finalmente el abdomen fue lavado en

agua corriente y se disecaron, despegando las

estructuras genitales. La armadura genital se

147

mantuvo en alcohol 70% w/v para ser dibujada.

Finalmente se guardaron en frascos pequeños de

genitalia, los cuales se mantuvieron unidos al es-

pécimen.

Las observaciones se realizaron en un

microscopio estereoscópico Carl Zeiss, Jena y

una lupa estereoscópica IVb, Carl Zeiss, y los di-

bujos se realizaron bajo una cámara clara Abbe,

Carl Zeiss, colocada en la lupa estereoscópica.

€) FOTOGRAFIAS

Las fotografías fueron realizadas en película FUJI

y tomadas mediante una cámara Leits.

f) CONFECCIÓN DE CLAVES

Las claves fueron elaboradas sobre la base de la

maculación alar, estructuras del tórax, abdomen

y de la armadura genital en ambos sexos cuando

están presentes o solamente, utilizando la arma-

dura del macho o hembra en el caso de descono-

cerse el sexo opuesto.

g) DISTRIBUCIÓN

Las localidades y coordenadas se determinaron

con EE.UU. Board on Geographic Names (1967)

y la localización de las zonas ecológicas con el

trabajo de Irwin y Schlinger (1986).

h) SISTEMÁTICA FILOGENÉTICA

Para el análisis filogenético es necesario estable-

cer las homologías entre los caracteres bajo estu-

dio. En el presente trabajo se siguieron los crite-

rios entregados por Wiley (1981), fundamental-

mente la similaridad de posición y el criterio de si-

milaridad especial.

Para construir los cladogramas filogenéticos

se usaron los siguientes programas: PAUP versión

3.0 (Swofford, 1989) y McClade versión 2.1

(Maddison and Maddison, 1987) instalados en un

computador Mackintosh, SE.

Se confeccionó además, manualmente, un

cladograma hecho sobre los postulados de Hen-

nig (1968), modificado por Wiley (1981).

Para determinar la polaridad de los estados

Gayana Zool. 55(2), 1991

de caracteres se siguió el metodo del “out-group”

según la metodología de Hennig (1968), ampliada

por Wiley (1981), Farris (1982) y Maddison et al.

(1984).

El análisis fue reforzado por algunos de los

criterios propuestos por DeJong (1980), Crisci

and Stuessy (1980) y Wiley (1981).

En la reconstrucción de la filogenia se distin-

guieron los siguientes pasos:

1. Elección de los caracteres.

2. Confección de la matriz de datos, en don-

de se usaron caracteres homólogos bina-

rios (0 - 1).

3. Polarización de los estados de caracteres

(caracteres plesiomórficos y apomórficos).

4. Eliminación de los caracteres simple-

siomórficos.

5. Construcción de los cladogramas filogené-

ticos, sobre la base de caracteres apomór-

ficos (autapomorfías y sinapomorfías).

1) TERMINOLOGÍA

Para la terminología de los caracteres morfológi-

cos se siguió a: Peterson (1959), en la nomencla-

tura de las larvas; Dugdale (1971) y McGuffin

(1977), para la venación y patrón de maculación

de las alas (Figs. 1 y 2); Sibatini er al. (1954), Oka-

gaki er al. (1955) y Ogata et al. (1957), para la ge-

nitalia del macho (Figs. 6 y 7); y a Dugdale (1971

y 1980), para la genitalia de la hembra (Figs. 9 y

10).

148

h) ABREVIATURAS USADAS EN LAS FIGURAS

apófisis anteriores del ovopositor.

sutura adfrontal.

ántena.

apófisis posteriores del ovopositor.

apéndice palpebriforme.

banda adterminal del ala anterior.

banda antemedial del ala anterior.

banda basal del ala anterior.

banda medial del ala anterior.

banda postmedial del ala anterior.

banda subterminal del ala anterior.

banda terminal del ala anterior.

corpus bursae.

cerda estipular.

ceratoteca.

cestum.

cornuti.

colliculum.

cerdas del palpo labial 1 y 2.

cremáster.

costa valvar.

ducto eyaculador.

ductus bursae.

ductus seminalis.

espiráculo.

espiritrompa.

espinerete.

funda del aedeagus.

frente.

cerdas del cuerpo de la larva.

lóbulo del ovopositor.

mesoscutum.

mesoscutellum.

metascutum.

metascutellum.

Ojo.

ocelos.

patagia.

placa basal.

saccus.

sacculus.

signum.

segmentos del palpo labial 1 y 2.

tegumen.

tegula.

uncus.

vesica.

yuxta.

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

FiGS. 1-3. Fig. 1 maculación alar de un geométrido en donde también se muestra el lóbulo del ala posterior; Figs. 2 y 3 vis

ta dorsal y lateral de los esclerites que conforman el tórax de un lepidóptero

149

Gayana Zool. 55(2), 1991

RESULTADOS

DIAGNOSIS PARA EL COMPLEJO DE GÉNEROS DEL GRUPO

PACHROPHYLLA S. L

Los géneros y especies del grupo Pachrophylla

poseen alas estrechas y largas, las que pueden va-

riar en envergadura; el palpo labial es porrecto y

el segundo segmento es 4 veces más largo que el

tercero, el cual es pequeño y globoso; la frente es

lisa, sin escamas erectas; la antena es delgada y fi-

liforme, la superficie dorsal es ampliamente esca-

mosa, la superficie ventral ciliada; los machos lle-

van un lóbulo en la región anal de las alas poste-

riores; los espolones de las tibias medias y poste-

riores siempre presentes; las hembras tienen las

alas posteriores normales y no llevan un pincel de

pelos en las tibias posteriores, lo cual es caraterís-

tico para los machos. Las alas anteriores tienen 2

areolas, las venas R>, R3, Ry y Rs nacen del ápice

de la areola externa y a menudo las venas R3 y

Ry están pedunculadas; la vena M) está más cer-

ca de M3 que de M ¡; venas M3, Cuy y Cu) subpa-

ralelas entre sí, con una vena anal (A). Las alas

posteriores pueden tener las venas Sc y Rs anas-

tomosadas o solamente unidas por una pequeña

vena transversal en el término de la celda discal;

las venas Rs y M¡ pedunculadas; venas Mz y Cuy

libres Oo pedunculadas; lóbulo con 1 6 2 venas

anales.

La genitalia del macho con las valvas por lo

general con una hendidura en el ápice; el uncus

simple o de varias formas modificado; vesica del

aedeagus armada o no. Hembra generalmente

con un pequeño esclerite ventral posterior al ste-

rigma, que corresponde al noveno esternite abdo-

minal.

CLAVE PARA SEPARAR EL COMPLEJO DE GÉNEROS DEL GRUPO PACHROPHYLLA, BASADA EN LA

VENACIÓN ALAR Y LA GENITALIA DEL MACHO

1. Lóbulo de las alas posteriores con 2 venas anales

Lóbulo de las alas posteriores con 1 vena anal (A 3), a veces está levemente insinuada en la ba-

se una segunda vena anal (A)

Valvas de ápice sinuoso o con una leve hendidura; sin proceso saccular

Valvas con una profunda hendidura en el ápice; sacculus con proceso espiniforme

Margen costal liso; espolones de la tibia posterior reducidos; ápice de la valva sinuoso

Uncus simple, largo, romo o de ápice agudo; vesica con | grupo de espinas

Uncus con una protuberancia deprimida cerca de su ápice; vesica con 2 grupos de espinas

150

Butleriana n. gen.

Warrenaria n. gen.

Fueguina n. gen.

Margen costal de la valva con una pequeña proyección palpebriforme; espolones apicales de

la tibia posterior bien desarrollados; ápice de la valva con una hendidura central

Parapachrophylla n. gen.

Pacrophylla Blanchard

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

Butleriana n. gen.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Pachrophylla minor Butler, 1882.

DIAGNOSIS

Este género puede ser reconocido porque está

constituido por especies pequeñas (envergadura

alar hasta 28 mm), de color castaño oscuro O gris,

a veces con manchas cremas y anaranjadas débi-

les, sobre las alas anteriores. Las alas posteriores,

blanco cenicientas, con el lóbulo muy pequeño,

delgado y subtrianguliforme.

RECONOCIMIENTO

Cabeza sin ocelos; chaetosemata presente; ante-

nas filiformes, delgadas. Alas posteriores con una

sola vena anal en el lóbulo, a veces hay otra vena

que sólo está insinuada en su base (B. minon); el

lóbulo está completamente expandido, es

estrecho y subtriangular, alcanza la mitad del lar-

go de las alas; las venas S¿ y Ry están anastomo-

sadas en toda la longitud de la celda (figs. 8, 22 y

30).

GENITALIA DEL MACHO: Valvas simples, con una pro-

yección bulbosa en la región central del margen

ventral, ápice dividido; uncus variable; vesica del

aedeagus armada con espinas.

GENITALIA DE LA HEMBRA: NOVeno esternite ausente;

bursa copulatrix globosa, ovoide o subrectangu-

lar; signum presente a la forma de bandas anuli-

formes o ausente; apófisis posteriores 2 veces más

larga que las anteriores.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: El género está distribuido

desde la Segunda a la Duodécima Región de Chi-

le (desde Las Zorras hasta Bahía Orange) (Figs.

26 y 31).

ETIMOLOGÍA

Este género está dedicado al naturalista inglés A.

G. Butler, de fines del siglo pasado. El género es

femenino.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DEL GÉNERO BUTLERIANA N. GEN. BASADA EN LA GENITALIA DEL

MACHO

1 Vesica armada por un conjunto de espinas, uncus comprimido

Salada a e E O a eiatnis creian

DO ao

gada de posición lateral

Vesica inerme; uncus deprimido con la región apical más ancha y truncada, la región dor-

Butleriana fasciata (Butler) n. comb.

Yuxta subcuadrangular, con proyecciones en su región media y/o lateral

Yuxta cuadrangular, profundamente dividida en su región media; uncus con ápice trunca-

Butleriana fumosa (Butler) n. comb.

Yuxta subcuadrangular con un par de proyecciones cortas de posición central y una del-

Butleriana minor (Butler) n. comb.

Yuxta subcuadrangular con 2 proyecciones posterolaterales rectangulares cortas

Butleriana oculata (Mabille) n. comb.

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO BUTLERIANA N. GEN. (EXCEPTO B. OCULATA

(MABILLE) N. COMB.) BASADA EN LA GENITALIA DE LA HEMBRA

Bursa copulatrix globosa o rectangular, con una banda o franja de espinas en su región

basal; colliculum esclerosado

Gayana Zool. 55(2), 1991

'Ñ

2(1) Bursa copulatrix globosa, con una banda semianular de microespinas en el tercio basal,

cestum rectangular

cestum cuadrangular

Butleriana fumosa (Butler) n. comb.

Bursa copulatrix subrectangular, con una franja de espinas débiles y dispersas en su base;

Butleriana minor (Butler) n. comb.

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO BUTLERIANA N. GEN. BASADA EN LA

MACULACIÓN ALAR DEL MACHO

] Ala anterior del macho con una barra rectangular negra cerca del ángulo externo, en el

sector de la banda medial; polillas grises oscuras y castaño oscuras

Ala anterior del macho sin la barra rectangular negra; polillas con manchas y bandas cre-

mas, gris claro y anaranjadas

Butleriana oculata (Butler) n. comb.

Butleriana fasciata (Butler) n. comb.

Butleriana fumosa (Butler) n. comb.

2(1) Superficie dorsal de las alas anteriores castaño-gris a gris oscuro

2? Superficie dorsal de las alas anteriores castaño-claro a cremoso, sobre él destacan las ban-

das por su color castaño oscuro o líneas negras ........

3(2) La barra rectangular negra está bordeada en su región anterior, posterior y dorsal por es-

camas de color anaranjado CÍarO ....ooooconoconicncnnnnconccnnos

3 La barra rectangular negra está limitada en la región anterior y posterior por 2 manchas

blancas angulosas

Butleriana fasciata (Butler, 1882) n. comb.

(Figs. 4 - 11 y 26)

Pachrophylla minor var. fasciata Butler, 1882;

Bartlett-Calvert, 1894, 87:530.

Tipo

Holotipo. Hembra, Las Zorras, Chili 82-

107, 1951-342, T. Edmonds. Depositado

en el British Museum (Natural History),

Londres, Inglaterra (BMNH). Vista la fo-

to del Holotipo.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL

“Es distinta de la forma típica por tener una faja

central, muy bien marcada, la cual se divide un

poco más arriba de la vena media en dos fajas

Butleriana minor (Butler) n. comb.

oblicuas que se inclinan hacia adentro; los puntos

negros marginales casi unidos formando una lí-

nea continua; alas anteriores y el cuerpo gris. Ex-

pansión de las alas, 27 mm.” (Bartlett-Calvert,

1894, traducido de Butler, 1882).

DESCRIPCIÓN DEL MACHO

Tacoma ceratico (Fig. 4): Frente cubierta por esca-

mas cremas, castaño y castaño oscuras; ocelos

ausentes: chaetosemata presente; antenas

simples, filiformes, primer segmento cubierto por

escamas similares a la frente, superficie dorsal

con escamas castaño oscuras, superficie ventral

con cilias. Palpos labiales porrectos, cubiertos por

escamas castaño oscuras, segmento 2 es mayor

en longitud a los segmentos 1 y 3 (2 y 4 veces res-

pectivamente), este último es globoso y pequeño.

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

FiGs. 4-5. Imagos de Butleriana fasciata: Fig. 4 macho y Fig. 5 hembra en vista dorsal. El trazo indica 1 cm.

Tacma torácico (Fig. 4): Patagias pequeñas cubier-

tas principalmente por escamas de color crema;

tégulas pequeñas con una franja externa de esca-

mas castaño oscuras y otra interna de escamas pl-

liformes cremas; mesoscutum, mesoscutellum y

metascutum con escamas castaño y castaño oscu-

ras, metascutellum con una franja central de es-

camas cremas y con los bordes oscuros. Metascu-

tum con un par de pequeños penachos de esca-

mas. Superficie ventral del tórax con escamas pi-

liformes claras. Patas anteriores con la epífisis en

el tercio distal de la tibia, ocupando toda esta lon-

gitud. Patas mesotorácicas con un par de espolo-

nes apicales, espolón interno dos veces más largo

que el externo. Patas metatorácicas con un pincel

de pelos en la tibia y dos pares de espolones, uno

medial y otro apical; en ambos, el espolón interno

es dos veces más largo que el externo; fémur con

un mechón de escamas en el ápice distal interno.

Patas en la cara externa con franjas oscuras en

los tarsos, tibia completamente oscura, cara in-

terna de color crema.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 4): Super-

ficie dorsal castaño claro a cremoso como patrón

general, sobre éste destacan las bandas de un co-

lor castaño más oscuro o líneas negras, el sector

de la celda medial es notorio por su color más cla-

153

ro, el cual está limitado por una barra de color

castaño que se ubica entre las venas Cu) y A);

hacia el margen externo esta barra está limitada

por dos bandas estrechas y pequeñas de color

blanco. Superficie ventral castaño ceniciento,

donde destacan las bandas por su tonalidad más

Oscura.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 4): Su-

perficie dorsal y ventral blanco ceniciento, lóbulo

mantiene el patrón indicado.

Tama ABDOMINAL (Fig. 4): Superficie dorsal y

ventral castaño ceniciento; segmentos 3 y 4 ma-

yores a los otros en longitud.

GENITALIA DEL MACHO (Figs. 6-7): Uncus comprimi-

do, más ancho en el ápice, el cual es trunco y con

el extremo dorsal agudo, y en longitud él es 1/2

más pequeño que la valva; gnathos ausente; so-

cius ausente; valvas 3 veces más largas que su

ancho máximo, con el tercio distal más estrecho,

ápice dividido por una escotadura poco profun-

da; sacculus normal; yuxta subcuadrangular; sac-

cus subcuadrangular. Aedeagus subigual al largo

de las valvas; ductus seminalis emerge del tercio

anterior; vesica inerme.

Gayana Zool. 55(2), 1991

lem

Frios. 6-8. Genitalia y venación alar del macho de Butleriana fasciata (Butler) n. comb.: Fig. 6 genitalia en vista ventral, Fig.

7 aedeagus en vista lateral y Fig. 8 venación del ala anterior y posterior.

154

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

EXPANSIÓN ALAR DEL MACHO: 28 mm.

REDESCRIPCIÓN DEL HoLoTIPO (Fig. 5).

Similar al macho en todos sus caracteres, pero di-

fiere en que las alas posteriores no llevan un lóbu-

lo y por lo tanto sólo existe una vena anal (A)>)

(Fig. 11). Las tibias metatorácicas no llevan el

pincel de pelos y en el fémur el mechón de esca-

mas caractetístico del macho.

GENITALIA DE La HEMBRA (Figs. 9-10): Bursa copu-

latrix ovoide, membranosa; ductus bursae corto,

2/3 más corto que la bursa, dos veces más largo

que ancho; cestum la mitad del largo del ductus,

formado por un anillo que no se cierra; collicu-

lum membranoso; ductus seminalis nace de una

protuberancia membranosa por sobre el collicu-

lum. Apófisis anteriores y posteriores similares en

tamaño.

FiGs. 9-11. Genitalia y venación alar de la hembra de Butleriana fasciata (Butler) n. comb.: Fig. 9 genitalia en vista dorsal,

Fig. 10 en vista ventral y Fig. 11 venación del ala anterior y posterior.

155

Gayana Zool. 55(2), 1991

EXPANSIÓN ALAR DEL HOLOTIPO: 27 mm.

HosPEDADORES: Desconocidos.

PerloDO DE vueLo: 11 de julio al 15 de abril.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Chile: Viña del Mar (33%

02' S) y Las Zorras (24% 29 S) (Fig. 26).

MATERIAL EXAMINADO (2 machos y 6 hembras):

1 macho, Marga Marga, IX. 1927, Col. Ureta (MNHN); 1

hembra (Holotipo), Hembra(?), Las Zorras, Chili, T. Ed-

monds (BMNH): 1 macho, V. del Mar, 11-Julio-1953 MNHN);

1 hembra, Viña del Mar 5-1X-1953 (MNHN); 1 hembra, Viña

del Mar, 15 Agosto 1953 (MNHN); 2 hembras, Viña del Mar,

11-1V-1953 (MNHN); 1 hembra, Viña del Mar, 15-IV-1953

(MNHN) [CHILE].

OBSERVACIONES

Esta especie es reconocible por la presencia de

bandas sobre la superficie de las alas anteriores y

por su color relativamente más claro que las Otras

especies del género. La maculación varía escasa-

mente entre el macho y la hembra. Su distribu-

ción está restringida a la zona xero y mesomórfi-

ca del país, más precisamente al desierto interme-

dio (por la costa), al desierto coquimbano y la cor-

dillera costera central.

Butleriana fumosa (Butler) n. comb.

(Figs. 12 - 17 y 26)

Pachrophylla minor var. fumosa Butler, 1882;

Bartlett-Calvert, 1894, p. 530.

Tipo

Holotipo. Macho, CHILI 82-107, 1951-

343, T. Edmonds. Depositado en el Bri-

tish Museum (Natural History),

Londres, Inglaterra (BMNH). Vista la fo-

to del Holotipo.

Alotipo. Hembra, CHILI 82-107, T. Ed-

monds. Depositado en el British Mu-

seum (Natural History), Londres, Ingla-

terra (BMNH) Vista la foto del Alotipo.

156

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DEL HOLOTIPO

“Un poco más grande que la forma típica; las alas

anteriores de un color moreno ahumado, sedosas,

muy oscuras y variadas con rosado muy tenue y

atravesadas por líneas negras; existe la rayita

negra y blanca cerca del ángulo externo; las alas

anteriores y el cuerpo por debajo de un gris

mucho más oscuro que en el tipo” (Bartlett-

Calvert, 1894; traducido de Butler, 1882).

REDESCRIPCIÓN

Tacma cerAticO (Fig. 12): Frente y vertex cubiertos

por escamas castaño y grises oscuras; ocelos

ausentes; chaetosemata presente; antenas

simples, dorsalmente gris oscuras y ventralmente

ciliadas. Palpos labiales gris oscuros, con el se-

gundo segmento cuatro veces más largo que el

tercero, el cual es pequeño y globoso.

Tacoma torácico (Fig. 12): Patagias, tégulas y super-

ficie dorsal del tórax con escamas grises Oscuras y

cremas entremezcladas, las últimas en menor

proporción; superficie ventral con escamas pilo-

sas de color crema. Patas mesotorácicas con un

par de espolones apicales en la tibia, el espolón in-

terno es dos veces más largo que el externo. Fé-

mur metatorácico con un mechón de pelos en el

ápice distal de la cara interna, tibias con dos pares

de espolones: uno medial y otro apical; en ambos,

el espolón interno es dos veces más largo que el

espolón externo. Todas las patas son oscuras en

su cara externa (gris a castaño) y presentan

anillos de color crema en la tibia y tarsos. La su-

perficie interna es de color crema.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 12): La

superficie dorsal de color gris oscuro con algunas

regiones mucho más claras (anaranjado suave), lo

que es más notorio en la zona donde va la barra

rectangular de color negro cerca del ángulo exter-

no del ala. Las bandas están representadas débil-

mente y son poco notorias debido a su color Os-

curo. La banda adterminal está esbozada como

una línea delgada, de color anaranjado suave. Su-

perficie ventral gris, siendo el margen externo

más Oscuro.

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

Fi6s. 12 y 13. Imagos de Butleriana fumosa (Butler) n. comb.: Fig. 12 macho y Fig. 13 hembra en vista dorsal. El trazo indi-

ca | cm.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 12): Su-

perficie dorsal y ventral blanco ceniciento, al

igual que el lóbulo pequeño, triangular y

estrecho.

TAGMA ABDOMINAL: Gris oscuro en la superficie dor-

sal y claro en la ventral.

GENITALIA DEL MAcHO (Figs. 14 y 15): Uncus delga-

do, de ápice agudo, 1/2 más corto que el largo de

las valvas; gnathos y socius ausente; valvas largas

y estrechas, 3.3 veces más largas que anchas, con

el tercio apical más estrecho y el ápice débilmente

dividido en su región media; sacculus normal;

yuxta subcuadrangular, profundamente dividida

en su región media; saccus subrectangular con el

borde posterior redondeado. Aedeagus subigual

al largo de las valvas, 8 veces más largo que

ancho. Vesica armada por un conjunto de varias

espinas.

EXPANSIÓN ALAR DEL HOLOTIPO: 26 MM.

DESCRIPCIÓN DE LA HEMBRA (Fig. 13): Similar al

macho, pero con las bandas más notorias,

anchas, sin el mechón y pincel de pelos en las pa-

tas posteriores y sin un lóbulo en las alas poste-

riores.

GENITALIA DE LA HEMBRA (Figs. 16 y 17): Bursa copu-

latrix globosa, con una banda semianular de

157

microespinas en el tercio basal; ductus bursae 1/2

más corto que la bursa, 3 veces más largo que

ancho; cestum rectangular, 1/2 de la longitud del

ductus, colliculum levemente esclerosado; ductus

seminalis emerge por sobre el cestum desde una

protuberancia membranosa. Apófisis posteriores

2 veces más largas que las anteriores.

EXPANSIÓN ALAR DEL ALOTIPO: 27 MM.

HosPEDADORES: Desconocidos.

PERÍODO DE VUELO: Enero.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Chile: Parque Nacional

Villarrica (Cautín) (39% 16” S) (Fig. 26).

MATERIAL EXAMINADO (2 machos y 1 hembra):

1 macho (Holotipo), Chili, T. Edmonds (BMNH); 1 hembra

(Alotipo), Chile, T. Edmonds (BMNH); 1 macho, CHILE,

Cautín, P.N. Villarrica, Enero 7, 1990, L.E. Parra col. (MZUC);

1 hembra, CHILE, Cautín, P.N. Villarrica, Enero 7, 1990, L.E.

Parra col. (MZUC) [CHILE]

OBSERVACIONES

Esta especie se caracteriza por el color oscuro de

sus alas anteriores y la ausencia de bandas y

manchas, las cuales son poco notorias en el

macho. La hembra, a diferencia del macho, pre-

Gayana Zool. 55(2), 1991

0,5mm

AVE

FIGS. 14-17. Genitalia del macho y de la hembra de Butleriana fumosa (Butler) n. comb.: Fig. 14 genitalia del macho en vis-

ta ventral, Fig. 15 aedeagus en vista lateral, Fig. 16 genitalia de la hembra en vista ventral y Fig. 17 en vista dorsal.

158

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

senta un patrón de maculación más notorio y es

difícil diferenciarla con las otras especies del gé-

nero; necesariamente la genitalia posee los carac-

teres separadores.

Esta especie fue descrita por Butler sin indi-

car localidad; los únicos ejemplares que se poseen

fueron colectados en el Parque Nacional Villarri-

ca (IX Región), es decir, en la Selva Valdiviana

septentrional y en la región precordillerana.

Butleriana minor (Butler, 1882) n. comb.

(Figs. 18 - 26)

Pachrophylla minor Butler, 1882; Bartlett-

Calvert, 1894, p. 530

Tipo

Holotipo. Macho, CHILI 82-107, 1951-

340, T. Edmonds. Depositado en el Bri-

tish Museum (Natural History),

Londres, Inglaterra (GMNH). Vista la fo-

to del Holotipo.

Alotipo. Hembra, CHILI, 82-107, 1951-

341, T. Edmonds. Depositado en el Bri-

tish Museum (Natural History),

Londres, Inglaterra (¡MNH). Vista la fo-

to del Alotipo.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DEL HOLOTIPO

“Muy parecida a P. obelata o P. linearia de Fel-

der, pero más pequeña y con las alas anchas; las

posteriores comparativamente mayores y más

anchas; como en los machos de P. linearia, las

alas son más oscurecidas por las líneas y rayas

negras sobre las venas que en la hembra descolo-

rida de Blanchard o aún la variedad macho dada

por Felder; la raya negra y blanca longitudinal

cerca del ángulo externo de las alas anteriores es-

tá muy bien marcada. Expansión de las alas, 29

mm.” (Bartlett-Calvert, 1894, traducido de

Butler, 1882).

REDESCRIPCIÓN

Tacma CeFALICO (Fig. 18): Frente con escamas cas-

taño claro, castaño oscuro y cremas entremezcla-

das; segmento basal de las antenas similar en co-

lor a la frente, antenas simples, filiformes, super-

ficie ventral ciliada, cilias cortas, superficie dorsal

cubierta de escamas castaño oscuro; chaetosema-

ta presente; ocelos ausentes. Palpos labiales simi-

lares en coloración a la frente, segmento 2 subi

gual al segmento 1 y cuatro veces mayor en lon-

gitud que el segmento 3, el cual es globoso y pe-

queño.

TacmaToRAcICO (Fig. 18): Patagias cubiertas por es-

camas castaño oscuro y cremas; tégulas con esca-

mas de color castaño, castaño oscuras y cremas;

mesoscutum y mesoscutellum con escamas claras

y oscuras en la tonalidad castaño; metascutum

castaño oscuro a grisáceo y metascutellum con

FiGs. 18-19. Imagos de Butleriana minor (Butler) n. comb.: Fig. 18 macho y Fig. 19 hembra en vista dorsal. El trazo indica

l cm.

159

Gayana Zool. 55(2), 1991

una franja central de escamas cremas, hacia los

lados lleva escamas oscuras. Epífisis nace en el

tercio distal de la tibia abarcando toda esa longl-

tud. Tibias mesotorácicas con un par de espolo-

nes apicales, el espolón interno es 2 veces más lar-

go que el externo. Tibias metatorácicas con un

pincel de pelos y dos pares de espolones, un par

medial y otro apical, en ambos el espolón interno

es 2 veces mayor al externo; fémur con un

mechón de escamas en el ápice distal interno. To-

das las patas son cremas en su superficie interna

y castaño clara externamente; en la región de los

tarsos lleva bandas con escamas más oscuras.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 18): Co-

lor general castaño grisáceo, abigarrado con

manchas pequeñísimas más oscuras; bandas ante-

medial y medial notorias en el sector del tronco

de las venas medias por dos líneas angulosas blan-

cas, entre ambas bandas en este sector lleva una

banda castaño oscura subcuadrangular; banda

subterminal levemente notoria por su color casta-

ño rosáceo; banda adterminal compuesta por

grupos de escamas blanco y castaño OSCUFO;

mancha discal orbicular castaño-rosácea. Superfi-

cie ventral de color castaño ceniciento.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 18): Su-

perficie dorsal y ventral castaño amarillento

suave, siendo el lóbulo de un moreno más inten-

So.

Tacoma asbominal (Fig. 18): Superficie dorsal y

ventral castaño ceniciento, siendo el vientre un

poco más claro; segmentos 3 y 4 más grandes que

los otros, generalmente alrededor de 2 veces.

GenrraLia DeL Macho (Figs. 20 y 21): Uncus grueso,

fuerte, de ápice agudo, 1/3 más corto que las val-

vas; socius ausente; gnathos ausente; valvas 4 ve-

ces más largas que anchas, tercio distal más

estrecho que los 2/3 anteriores, ápice dividido por

una escotadura poco profunda; sacculus normal;

yuxta subcuadrangular, con 2 proyecciones pos-

teriores cortas y dos laterales delgadas; saccus

triangular de ápice redondeado. 4Aedeagus subi-

gual en tamaño a las valvas; ductus seminalis

emerge en el tercio anterior de la funda; vesica ar-

mada.

160

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 25 mm.

DESCRIPCIÓN DE La HEMBRA: (Fig. 19)

Similar al macho en todos sus caracteres, pero las

alas posteriores no llevan lóbulo y con una vena

anal (A>) (Fig. 25). El fémur y tibias metatoráci-

cas no llevan un mechón ni el pincel de pelos ca-

racterístico del macho.

GENITALIA DE La HEMBRA (Figs. 23 y 24): Bursa copu-

latrix subrectangular, membranosa, con una

franja de espinas débiles en su región basal; duc-

tus bursae corto, es 1/6 del largo de la bursa; ces-

tum cuadrangular y anuliforme; colliculum débil-

mente esclerotizado; ductus seminalis nace de

una protuberancia por sobre el cestum. Apófisis

posteriores 2 veces más largas que las anteriores.

EXPANSIÓN ALAR DEL ALoTIPO: 21 mm.

Hosrebabores Desconocidos.

Periopo pe vueLo: 11 de octubre al 15 de abril.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA Chile: Viña del Mar (33%

02 S) y Quellón (43% 07 S) (Fig. 26).

MATERIAL EXAMINADO (2 machos y 3 hembras):

l macho (Holotipo), Chili, T. Edmonds (BMNH); 1 hembra

(Alotipo), Chili, T. Edmonds (BMNH;); 1 macho, Col 22-2-60,

T. Río Blanco, E. Krahmer (EK); 1 macho, Laguna Verde, 11

octubre 1936, Col. URETA (MNHN»; 1 hembra, Viña del Mar,

15-1V-1953 (MNHN1; 1 hembra, Quellón, Chiloé, 21-11-1956,

J.S. Vargas coll (MNHN) [CHILE]

OBSERVACIONES

Especie similar a las otras del género. Se diferen-

cia por la presencia de manchas más notorias en

las alas anteriores del macho. La hembra, muy se-

mejante a las Otras especies, se diferencia básica-

mente en la estructura de la genitalia.

La especie se encuentra distribuida desde Vi-

ña del Mar hasta Quellón en la Décima Región,

es decir, abarca desde la zona mesomórfica hasta

la higromórfica, fundamentalmente entre el de-

sierto coquimbano, la selva valdiviana (bosque de

Valdivia del Norte y bosque de Valdivia).

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

ÁS

lem

0,5mm

A 22

Fias. 20-22. Genitalia y venación alar del macho de Butleriana minor (Butler) n. comb.: Fig. 20 genitalia en vista ventral,

Fig. 21 aedeagus en vista lateral y Fig. 22 venación del ala anterior y posterior.

Butleriana oculata (Mabille, 1885) n. comb. 28, pl. IM Fig. 7.

(Figs. 27 - 31) Lobophora ? (Pachrophylla ?) oculata Mabille;

Staudinger, 1899, In: Prout, 1910, pp. 241.

Lobophora oculata Mabille, 1885, pp. 68-69. Pachrophylla oculata (Mabille) Prout. 1910.

Lobophora oculata Mabille; Mabille, 1891, Div. pp. 241-242.

161

Gayana Zool. 55(2), 1991

25 lem

Fias. 23-25. Genitalia y venación alar de la hembra de Butleriana minor (Butler) n. comb.: Fig. 23 genitalia en vista ventral,

Fig. 24 en vista dorsal y Fig. 25 venación del ala anterior y posterior.

162

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

B. fumosa

B. fasciata We

B. minor

FIG. 26. Mapa de distribución de las especies: Butleriana fas-

ciata (Butler) n. comb., B. fumosa (Butler) n. comb. y B. mi-

nor (Butler) n. comb.

Tipo

Holotipo. Macho, Terre du Feu, Hyades

$ Hahn 1885, B. Orange, 2928.85. De-

positado en el Muséum National d'His-

toire Natureile, Paris, Francia (MNHNP).

Vista la foto del Holotipo.

163

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DEL HOLOTIPO

“Alas anteriores amplias, gris-cenicientas, con 4

sectores de bandas; bandas compuestas por líneas

negras dobles más que en conjunto, los intervalos

son oscuros: banda basal sinuosa, segunda angu-

losa en el centro del ala; tercera cerca del margen

con rayas negras notables; cuarta en la región

subterminal antes del ángulo interno con dos

puntos negros que están rodeados de blanco en

forma de ojo. Borde externo limitado por una lí-

nea blanca, punctiforme; flecos precedidos por

una cuerda punctiforme negra. Alas posteriores

grises, con una zona oscura débil, región terminal

rodeada de negro”. (Mabille, 1885; traducido del

latín).

REDESCRIPCIÓN

TAGMA CEFALICO (Fig. 27): Frente y vertex con esca-

mas cremas; antenas simples, filiformes, superfi-

cie dorsal castaño oscura mezclada con escamas

cremas, superficie ventral ciliada; ocelos ausen-

tes; Chaetosemata presente. Palpos labiales

porrectos, cubiertos por escamas castaño oscuras

y cremas, segmento 2 cuatro y dos veces mayor

al segmento 3 y 1 respectivamente.

FIG. 27. Macho en vista dorsal de Butleriana oculata (Ma-

bille) n. comb. El trazo indica 1 cm.

TAGMA TORACICO (Fig. 27): Patagias y tégulas con es-

camas anaranjadas al igual que la superficie dor-

sal del tórax. Superficie ventral crema. Patas me-

sotorácicas con un par de espolones apicales en la

tibia; de éstos, el espolón interno es dos veces ma-

yor al externo. Fémur con la superficie externa

Gayana Zool. 55(2), 1991

castaño oscuro, gris en el interior; tibias y tarsos

anillados por escamas castaño oscuras y cremas.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 27): Alas

abigarradas por manchas de color castaño oscu-

ro, anaranjado y rosado. Bandas basal y anteme-

dial difusas, representadas por franjas de color

castaño claro sobre un fondo gris-anaranjado.

Bandas medial y postmedial anchas y de color

castaño oscuro, entre ambas hay una franja

mucho más ancha de color gris y anaranjado que

está interrumpida por una franja castaño rosácea

en el sector del tronco medial que lleva una línea

angulosa blanca, cuyo vértice se dirige hacia

adentro. Banda subterminal castaño claro ten-

diendo al anaranjado, banda adterminal repre-

sentada por un grupo de escamas blancas, trian-

gulariformes, alternadas con escamas oscuras;

banda terminal castaño oscura. Todas estas ban-

das están interrumpidas en la región del tronco

medial por dos manchas anaranjadas a rosado y,

en el sector de las venas cubitales, por dos

manchas claras en cuyo centro hay dos líneas de

escamas Castaño.

Superficie ventral gris con regiones más cla-

ras, anaranjadas, que destacan la región de la

mancha discal con un punto oscuro de pequeño

tamaño y la región terminal —desde el término

de la banda postmedial y el borde externo— con

franjas claras. Hacia la región basal y el borde in-

terno aparecen dos manchas claras.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 27): Su-

perficie dorsal blanco grisácea, con dos regiones

oscuras: en el borde externo y en el sector medio

como también en el lóbulo. Superficie ventral si-

milar en patrón a la superficie dorsal, pero más

Oscura.

Tacoma asbomINAL (Fig. 27): Superficie dorsal y

ventral castaño claro.

GENITALIA DEL MAcHo (Figs. 28 y 29): Uncus aplasta-

do dorso-ventralmente, con el ápice redondeado,

largo, alcanza la mitad de la longitud valvar; so-

cius y gnathos ausentes; valvas 3,5 veces más lar-

gas que anchas, con el ápice dividido (en la región

del cucullus), su tercio posterior es estrecho; sac-

culus normal; yuxta subcuadrangular, con dos

proyecciones posterolaterales rectangulares cor-

tas, saccus subtriangular. Aedeagus corto, 5 ve-

ces más largo que ancho, las valvas son 1,5 veces

más largas que su longitud máxima; ductus semi-

nalis emerge en la mitad de la funda; vesica arma-

da por un conjunto de espinas.

lem

HH ———————————,

Fics. 28-30. Genitalia y venación alar del macho de Butleriana oculata (Mabille) n. comb.: Fig. 28 genitalia en vista

ventral, Fig. 29 aedeagus en vista lateral y Fig 30 venación del ala anterior y posterior.

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

EXPANSIÓN ALAR DEL HOLOTIPO 26 mm.

HemBRA: Desconocida.

HosPEDADORES: Desconocidos.

PerioDO DE vuELo: Marzo.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Chile: Isla Guarello (50%

23” S) a Bahía Orange (Isla Hoste, Península

Hardy) (55% 31” S) (Fig. 31).

MATERIAL EXAMINADO (2 machos):

1 macho (Holotipo), Terre du Feu, Hyades € Hahn 1885, B.

Orange, 2928.85 (MNHNP); 1 macho, Guarello, 4-3-87, López:

Coll (MZUC) [CHILE]

OBSERVACIONES

Esta especie es la más disímil del grupo, funda-

mentalmente porque carece de la barra negra de

la banda mediana de las alas anteriores y por la

presencia de una marcada maculación de las mis-

mas, destacando los colores anaranjados y claros.

La especie presenta la distribución más

austral, encontrándose en Isla Guarello y Bahía

Orange en la zona ecológica Pacífica Austral.

FIG. 31. Mapa de distribución de la especie B. oculata (Ma-

bille) n. comb.

165

Fueguina n. gen.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Pachrophylla varians Butler, 1882

DIAGNOSIS

El género está constituido por dos especies que

varían notablemente en el tipo de maculación,

desde colores grises a rosado y castaño claro. Ve-

nas M3 y Cuy del ala posterior del maoho pedun-

culadas, al menos desde la base. Genitalia del

macho con sacculus del tipo espiniforme.

RECONOCIMIENTO

Cabeza sin ocelos; chaetosemata presente; ante-

nas filiformes. Alas anteriores variables en macu-

lación; lóbulo de las alas posteriores con dos ve-

nas anales, M3 y Cuy generalmente peduncula-

das (Figs. 35 y 40).

GENITALIA DEL Macho: Valvas con una gran hendidu-

ra en el ápice y con un proceso saccular espinifor-

me. Vesica del aedeagus armada.

GENITALIA DE LA HEMBRA: NOVENO Eesternite presente;

bursa copulatrix globosa; signum presente a la

forma de una banda ancha subanuliforme que va

dispuesta en la base de la bursa.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: El género se encuentra

distribuido entre la V y XII Región de Chile (Fig.

44).

ETIMOLOGÍA

El nombre del género representa la localidad más

austral de distribución que presenta (Tierra del

Fuego y zonas adyacentes). El género es femeni-

no.

Gayana Zool. 55(2), 1991

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO FUEGUINA N. GEN., BASADA EN LA

GENITALIA DEL MACHO Y LA MACULACIÓN ALAR

l Yuxta subtriangular con dos ramas laterales en el borde posterior; alas anteriores de color

gris-rosado, atravesadas por bandas más oscuras ......... Fueguina varians (Butler) n. comb.

Il Yuxta subcuadrangular con dos lóbulos centrales en el margen posterior; alas anteriores

castaño-claro a Ceniciento ...nocnnnnnnnnnnc....

Fueguina celovalva n. sp.

(Figs. 32 - 35 y 44)

Tipo

Holotipo. Macho, Termas de Río Blan-

co, Cautín-11-51. Depositado en el Mu-

seo de Zoología de la Universidad de

Concepción, Concepción, Chile (MZUC).

DESCRIPCIÓN DEL HOLOTIPO

TAGMA CEFALICO (Fig. 32): Frente y vertex cubierto

por escamas castaño claro y oscuro; antenas

simples, filiformes, superficie dorsal cubierta de

escamas oscuras, superficie ventral ciliada; ocelos

ausentes; chaetosemata presente. Palpos labiales

porrectos, dirigidos hacia adelante, cubiertos por

escamas castaño oscuras, las que emergen casi

perpendicularmente al eje del palpo, segmento 2

cuatro y dos veces mayor al segmento 3 y 1 res-

pectivamente.

FIG. 32. Macho adulto de Fueguina celovalva n. sp. en vista

dorsal. El trazo indica 1 cm.

A Fueguina celovalva n. sp.

Tacma torácico (Fig. 32): Patagias pequeñas, cu-

biertas por escamas castaño claro; tégulas pe-

queñas, con escamas castaño oscuras; superficie

dorsal del tórax castaño oscuro y claro; metascu-

tum con un par de penachos de escamas oscuras.

Superficie ventral del tórax cubierto por escamas

pilosas de color crema. Patas mesotorácicas con

un par de espolones apicales, el espolón interno

es dos veces más largo que el externo; fémur me-

tatorácico con un mechón de escamas en el ápice

distal de la superficie interna; tibias con dos pares

de espolones, uno apical y otro medial; en ambos,

el espolón interno es dos veces mayor al externo.

Superficie externa de las patas castaño, superficie

interna crema.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 32): Su-

perficie dorsal castaño claro a ceniciento. En la

región costal y en el sector de la banda medial

existe una franja clara, que parte de la costa y lle-

ga hasta el tronco de las venas radiales y por el la-

do externo lleva una pequeña mancha castaño

oscura. Hacia el margen externo, entre las venas

Rs y Cuy, existe otra mancha clara, luniforme, de

gran tamaño, cuyo borde cóncavo mira hacia la

región externa. En la zona —entre las venas Cu>

y A>— de la banda medial, hay una franja casta-

ño, subigual en ancho a la mancha descrita para

la región costal. Superficie ventral castaño ceni-

ciento.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 32): Su-

perficie dorsal y ventral castaño claro a ama-

rillenta.

TacMA ABDOMINAL (Fig. 32): Superficie dorsal y

ventral castaño amarillento.

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

0,5mm

e |

a 35

FiGs. 33-35. Genitalia y venación alar del macho de Fueguina celovalva n. sp.: Fig. 33 genitalia en vista ventral, Fig. 34

aedeagus en vista lateral y Fig. 35 venación del ala anterior y posterior.

167

Gayana Zool. 55(2), 1991

GENITALIA DEL MACHO (Figs. 33 y 34): Uncus delgado

y pequeño, de ápice agudo, sólo alcanza la mitad

de la longitud valvar; socius y gnathos ausentes;

valvas dos veces más largas que anchas, ápice (re-

gión del cucullus) bífido, dejando una cavidad

profunda y redondeada; sacculus armado por un

proceso espiniforme, grueso y terminado en pun-

ta, que alcanza los 2/3 de la longitud valvar; yux-

ta cuadrangular con dos lóbulos centrales en el

borde posterior; saccus cuadrangular con el mar-

gen anterior ondulado. Aedeagus nueve veces

más largo que ancho y subigual al largo de las

valvas; ductus seminalis emerge de la región

central de la funda; vesica armada por un grupo

de espinas.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 29 mm.

HemBRA: Desconocida.

HospeDADORES: Desconocidos.

Periobo pe vueLo: Desde el 7 de enero a marzo.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: CHILE: Termas de Río

Blanco (Cautín) (38% 34 S) a Parque Nacional

Villarrica (Cautín) 39% 25” S) (Fig. 44).

MATERIAL EXAMINADO (3 machos):

l macho (Holotipo), Termas de Rio Blanco, Cautin-11-51

¡MZUC); 1 macho (Paratipo), Termas de Rio Blanco, Cautín,

3.51 (mZUC»; 1 macho (Paratipo, CHILE, Cautin, P.N. Villarri-

ca, Enero 7, 1990, L.E. Parra (MZUC) [CHILE]

OBSERVACIONES

Especie de colores opacos y poco llamativos. Los

únicos ejemplares que se conocen provienen de la

parte norte del bosque valdiviano, más exacta-

mente del sector cordillerano de Cautín (IX Re-

gión).

ETIMOLOGÍA

El nombre específico dice relación con la hendi-

dura de la región del cucullus de la valva (co-

elos= cavidad, escotadura; valva= valvas).

168

Fueguina varians (Butler, 1882) n. comb.

(Figs. 36 - 44)

Pachrophylla varians Butler, 1882, p. 400.

Pachrophylla varians Butler; Bartlett-Calvert,

1894, p. 529.

Lobophora stenopterata Mabille, 1885, p. 68.

Lobophora stenopterata Mabille; Mabille, 1891,

Div. 26-28, pl. II, Figs. 6 y 6a.

Tipos

P. varians Butler. Macho (Holotipo),

Chili, 82-107, 1951-339.

Hembra (Alotipo), Chili 82-107. Deposi-

tados en el British Museum (Natural

History), Londres, Inglaterra (BMNH).

Vistas las fotos de los tipos.

L. stenopterata Mabille. Macho (Holoti-

po), Terre de Feu, Hyades € Hahn

1885, 2927.85, B. Orange. Depositado

en el Muséum National d'Histoire Natu-

relle, Paris, Francia (MNHNP). Vista la

foto del Holotipo.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DEL HOLOTIPO

HoLoriro “De un blanco crema, lustroso; las alas

anteriores atravesadas en el centro por una faja

gris pálida, angosta hacia el margen interno; con

puntos ferrugíneos sobre el área interna media,

bruscamente extendida sobre la vena del medio y

separándose en dos bandas hacia la costa; esta fa-

ja está orillada y atravesada por líneas grises Os-

curas, en zig-zag y con puntos negros; una serie

de rayitas negras con su centro blanco, en la par-

te externa del disco y en el margen una serie de

puntos negros pareados; el área basilar atravesa-

da por fragmentos de varias líneas paralelas y on-

duladas, salpicada de negro sobre las venas, las

alas posteriores sin dibujo; la superficie inferior

de un blanco crema; las alas anteriores teñidas

hacia el ápice de rosado-rojo”. (Bartlett-Calvert,

1894; traducido de Butler, 1882).

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 23 mm.

REDESCRIPCIÓN DEL MACHO:

TacMa ceFALICO Frente y vertex cubiertos por

abundantes escamas amarillentas; antenas

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

Fis. 36-37. Imagos de Fueguina varians (Butler) n. comb.: Fig

1 cm.

simples, filiformes; superficie dorsal cubierta por

escamas rojizas, superficie ventral cubierta de ci-

lios; ocelos ausentes; chaetosemata presente. Pal-

po labial cubierto por escamas rojizas y blancas

saliendo en forma diagonal al eje de palpo; segun-

do segmento dos veces más largo que el primero

y cuatro veces mayor al tercero, este último pe-

queño y globoso.

Tacoma torácico (Fig. 36): Patagias compuestas por

escamas amarillo-verdosas; tégulas amarillo-

verdosas, en el ápice del margen posterior rojizo.

Superficie dorsal del tórax con escamas amarillas,

castaño y rojizas entremezcladas; metascutum

con un par de penachos compuestos por escamas

claras y oscuras. Superficie ventral cremosa. Ti-

bias mesotorácicas con un par de espolones apl-

cales, el interno es 1/3 más largo que el externo;

fémur metatorácico con un mechón de escamas

en el ápice interno; tibias con un pincel de pelos y

dos pares de espolones: un par apical y otro me-

dial, en ambos el espolón interno es 1/3 más largo

que el externo.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 36): Su-

perficie dorsal gris-rosada como patrón general.

Banda basal levemente notoria por su color gris-

rosado, contrastado con el color amarillo verdoso

general de la región basilar (región entre bandas

basal y medial). Región entre las bandas medial y

o 7

.36 macho y Fig. 37 hembra en vista dorsal. El trazo indica

subterminal de color gris-rosado, describiendo

una figura subtriangular que limita con la vena

Cu) en la región interna del ala; toda esta área es-

ta atravesada por tres líneas compuestas de

manchas punctiformes negras y blancas. Banda

subterminal notoria por su color amarillo-

verdoso, amplia y bífida en la región costal: una

rama se dirige hacia el ápice del ala y la otra hacia

la región costal; por su borde externo y en la zona

de la vena Cu) está limitada por una barra casta-

ño oscura que llega hasta el borde externo del

ala, pero que está interrumpida por dos manchas

blancas; el lado interno de esta zona lleva dos

manchas blancas luniformes. Banda adterminal

constituida por grupos de escamas blancas, line-

ales e interrumpidas. Banda terminal formada

por manchas punctiformes, con escamas negras y

blancas.

Superficie ventral y región externa cremosas

y, los 2/3 internos, gris cenicientos.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 36):

Blanca a gris suave, tornándose más oscura en el

margen externo donde tiene un color moreno-

rosado. Lóbulo similar al tercio externo del ala.

Superficie ventral gris ceniciento.

TacMa ABDOMINAL (Fig. 36): Superficie dorsal gris

ceniciento, superficie ventral cremosa. Pigidio

con escamas piliformes de color crema.

169

Gayana Zool. 55(2), 1991

GentraLia DeL macho (Figs. 38 y 39): Uncus corto y

grueso, cuatro veces más pequeño que la longi-

tud de las valvas; socius ausente; gnathos ausen-

te; valvas dos veces más largas que anchas, pro-

fundamente divididas en el sector apical (región

del cucullus) de tal manera que aparece con un

ápice bífido; sacculus armado por un proceso di-

gitiforme que alcanza los 3/4 de la longitud val-

var; yuxta subtriangular con dos ramas laterales

anchas; saccus hemicircular. Aedeagus subigual

al largo de las valvas, aproximadamente 8 veces

más largo que ancho, extremo anterior de la fun-

da estrecho; ductus seminalis llega al límite del

tercio anterior de la funda; vesica armada por un

grupo de espinas.

EXPANSIÓN ALAR DEL MACHO: 24 mm.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DEL ALOTIPO

“En conjunto más oscuro y más gris que el

macho; las alas anteriores varian desde amarillo a

lila gris; la banda central, una banda subasilar y el

área externa, la cual está representada por una

banda lila y regularmente cuneiforme, atravesa-

da por lineas y manchas color chocolate, en vez

del color negruzco que tiene el macho, siendo las

venas más blancas con barrotitos negros; las alas

posteriores más o menos de un gris ahumado os-

curo; el cuerpo gris; la superficie inferior de un

gris ahumado; las áreas de la costa y ápice, de las

anteriores, lavadas con color carmín; el área api-

cal de la posterior levemente rojizada hacia el ápi-

ce; los palpos y el fémur rosado; las tibias y los

tarsos con fajas negruzcas”. (Bartlett-Calvert,

1894; traducido de Butler, 1882).

EXPANSIÓN ALAR DEL ALOTIPO: 25 mm.

REDESCRIPCIÓN DE LA HEMBRA (Fig. 37):

Similar al macho, solamente difiere en que las

alas posteriores no llevan un lóbulo y las venas

M3 y Cu; están notoriamente pedunculadas alre-

dedor de un tercio de su longitud (Fig. 43). Las

patas posteriores no llevan pincel de pelos en la

tibia y el mechón de escamas en el fémur. Sin sa-

co esternal.

lem

—_—_—_—___——,

FIGs. 38-40. Genitalia y venación alar del macho de Fueguina varians (Butler)n. comb.: Fig. 38 genitalia en vista ventral,

Fig. 39 aedeagus en vista lateral y Fig. 40 venación del ala anterior y posterior.

170

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

0,5mm

lem 43

FiGS, 41-43, Genitalia y venación alar de la hembra de Fueguina varians (Butler) n. comb.: Fig. 41 genitalia en vista

ventral, Fig. 42 en vista dorsal y Fig. 43 venación del ala anterior y posterior.

171

Gayana Zool. 55(2), 1991

GENITALIA DE La HEMBRA (Figs. 41 y 42): Bursa copu-

latrix subpiriforme, membranosa, tercio anterior

de la superficie interna y el borde dorsoventral

cubierto por microespinas; ductus seminalis nace

desde una protuberancia, por sobre el cestum,

cestum más largo que ancho, ocupa aproximada-

mente 1/3 de la longitud del ductus; colliculum

membranoso; apófisis posteriores dos veces más

largas que las anteriores.

EXPANSIÓN ALAR DE LA HEMBRA: 32 MM.

HosPeDADORES: Desconocidos.

Periopo DE vueLOo: Entre el 11 de enero al 19 de

abril.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Chile: Viña del Mar (33%

02” S) a Bahía Orange (Isla Hoste: Península

Hardy) (55% 31” S) (Fig. 44).

MATERIAL EXAMINADO (8 machos y 5 hembras):

1 macho (Holotipo), Chili 82-107, 1951-339(BMNH); 1 hembra

(Alotipo), Chili 82-107 (BMNH); 2 machos, Quellón, 17. Abril.

1955 (MNHN); 1 macho, Quellón, 19. Abril. 1955 (MNHN); 1

macho, Quellón, 16. Abril. 1955 (MNHN); 1 macho, Quellón,

18. Abril. 1955 (MNHN); 1 macho, Maullín, 9-11-1944 (mzU0);

l hembra, Termas de Cauquenes, 11-1-1953 (MNHN); 1]

hembra, Viña del Mar, 28-111-1953 (MNHN); 1 hembra, Prov.

Valdivia, Valdivia- CHILE, 30-3-60, E. Krahmer (MZUC). 1]

hembra, Prov. Valdivia, Sto. Domingo, Valdivia- CHILE, 19-

3-60, E. Krahmer (EK): 1 macho (Holotipo), Terre de Feu,

Hyades 8: Hahn 1885, 2927.85, B. Orange (MNHNP) (CHILE]

OBSERVACIONES

Especie bastante llamativa por el diseño y color

de las alas, similar en ambos sexos, característica

externa que la diferencia notablemente de la otra

especie del género.

La especie se distribuye entre las regiones

meso e higromórfica del país, principalmente en

las zonas ecológicas del desierto coquimbano, sel-

va valdiviana y pacífica austral.

Pachrophylla Blanchard, 1852

Pachrophylla Blanchard, 1852, p. 96.

172

E celovalva

FE. varians

FIG. 44. Mapa de distribución de las especies del género

Fueguina n. gen.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Pachrophylla linearia Blanchard, 1852,

p. 97; Atlas 2: pl. 7, Figs. 9, 9a y 9b.

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL

“Cuerpo largo, muy delgado. Cabeza redonde-

ada, pequeña. Palpos anchos y largos, excedien-

do mucho la caperuza, derechos y escamosos,

con su último artículo pequeño. Antenas delga-

das y sencillas. Tórax oblongo. Alas largas y an-

gostas; las anteriores a modo de hoja y un poco

agudas en la punta; las posteriores más cortas y

algo almenadas en el ángulo interno. Abdomen

largo y muy delgado. Patas sumamente delgadas”

(Blanchard, 1852).

DIAGNOSIS ACTUALIZADA

Alas largas y estrechas, de color castaño claro a

oscuro; ambos pares de espolones de las tibias

posteriores reducidos (Fig. 49).

RECONOCIMIENTO

Cabeza sin ocelos; chaetosemata presente; ante-

nas filiformes; tórax y abdomen castaño claros.

Ala posterior con venas Rs y S, libres, sólo están

unidas por una corta vena transversal en el térmi-

no de la celda discal; lóbulo con dos venas anales,

éste va plegado o sobrepuesto sobre el ala, es más

largo que ancho y alcanza a ocupar 1/3 de la lon-

gitud del ala (Fig. 50).

GENITALIA DEL MACHO: Valvas simples, 4,5 veces más

largas que anchas, ápice sinuoso; uncus simples;

saccus ahorquillado y aedeagus con la vesica ar-

mada.

GENITALIA DE La HEMBRA: Ver la descripción para la

única especie del género.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: El género tiene la distribu-

ción indicada para la única especie que le perte-

nece (Fig. 54).

ETIMOLOGÍA

El nombre del género proviene de las raíces

griegas: pachro= gruesa y phylla= hoja.

178

Pachrophylla linearia Blanchard, 1852

(Figs. 45 - 54)

Pachrophylla linearia Blanchard, 1852, p. 97.

Tipo

Holotipo. Hembra, CHILI, 1843, Gay,

15.43. Depositado en el Muséum Na-

tional d'Histoire Naturalle, Paris, Fran-

cia (MNHNP). Vista la foto del Holotipo.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DEL HOLOTIPO

“Cuerpo sumamente delgado, ceniciento. Alas

anteriores de un gris ceniciento, sembradas de

manchitas poco marcadas e irregulares, más obs-

curas, con dos o tres líneas longitudinales negruz-

cas hacia la punta, una larga y angosta mancha

del mismo color hacia el borde interno, y una

ringlera transversal de puntitos blanquizcos en la

extremidad. Alas posteriores enteramente de un

gris blanquizco. Las alas por debajo enteramente

de un blanco sucio y brillante” (Blanchard, 1852).

DESCRIPCIÓN DEL MACHO

TAGMa CEFALICO (Fig. 45): Frente con escamas blan-

Cas, cremas y castaño; antenas simples, profusa-

mente ciliadas en la superficie ventral y cubiertas

de escamas castaño en la región dorsal; segmento

basal con escamas cremas y castaño; chaetosema-

ta presente; ocelos ausentes; ojos glabros. Palpos

labiales diagonalmente dirigidos hacia arriba, con

las escamas castaño oscuras y cremas, dispuestas

radialmente al eje de los segmentos; segmentos 1

y 2 subiguales en longitud, 4 veces mayores al

segmento 3, el cual es globoso.

TacmMa torácico (Fig. 45): Patagias con escamas

cremas, castaño y castaño oscuras, éstas últimas

hacia la región externa; tégulas con dos franjas

de escamas, una externa de color castaño oscuro

y Otra interna de color blanco, ambas de igual

ancho; mesoscutum, mesoscutellum, metascu-

tum y metascutellum con escamas de color casta-

ño, castaño oscuro y cremas entremezcladas, con

un penacho de escamas de este mismo color a

ambos lados del metascutum. La epífisis nace de

la mitad basal de la tibia, ocupando el 50% de la

longitud de ésta. Tibia mesotorácica con un par

de espolones, el espolón interno es 2 veces más

Gayana Zool. 55(2), 1991

Fics. 45-46. Imagos de Pachrophylla linearia Blanchard: Fig. 45 macho y Fig. 46 hembra en vista dorsal. El trazo indica 1

cm.

largo que el externo. Tibia de las patas poste-

riores con un pincel de pelos y los espolones me-

diales y apicales pequeños, subiguales en tamaño

(1/4 de la longitud del espolón interno de las pa-

tas mesotorácicas); femur con un mechón de es-

camas en el ápice distal interno. Todas las patas

llevan franjas de escamas castaño rojizas y Cre-

mas alternadas.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 45): Su-

perficie dorsal castaño claro ceniciento, práctica-

mente uniforme, en que las manchas y bandas

son poco notorias o difusas debido a su pequeño

tamaño. Con tres líneas longitudinales de color

castaño oscuro a rojizo, hacia la punta y el mar-

gen externo del ala, sólo la primera línea (dividida

en tres trazos) —después del margen costal— to-

ca el margen externo; las otras dos limitan con la

banda adterminal, que está representada por una

línea de escamas blancas-cenicientas. Hacia el

margen interno, entre las venas Cu) y A), se en-

cuentra una franja castaño oscura, interrumpida

en su centro por una mancha blanco-ceniciento

que representa a la banda postmedial. Esta franja

limita hacia el borde externo con la banda adter-

minal. En el ángulo interno y, por el borde del

ala, lleva una línea castaño oscura que alcanza

1/3 de la longitud del ala.

En la superficie ventral el color es castaño

ceniciento, más claro que la superficie dorsal; la

banda adterminal se encuentra representada por

una línea blanca cenicienta difusa; el margen in-

terno es más claro, de color blanco-ceniciento.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 45): En

174

su superficie dorsal y ventral blanco ceniciento,

pero hacia el margen externo se hacen más oscu-

ras, debido a las escamas castaño claro. El lóbulo

del mismo color al resto del ala, pero en el borde

externo presenta un fleco de escamas pilosas

blanco-sedosas.

TAGMA ABDOMINAL: Castaño ceniciento.

GenITALIA DEL Macho (Figs. 47 y 48): Uncus delga-

do, fuerte, cuya longitud alcanza la mitad del lar-

go de las valvas, de extremo agudo; socius ausen-

te; gnathos ausente; valvas aproximadamente 4,5

veces más largas que su ancho máximo, apical-

mente de borde sinuoso; sacculus normal; yuxta

subcuadrangular con dos proyecciones laterales;

saccus ahorquillado, proyección central con bor-

de redondeado a romo; vinculum poco de-

sarrollado. Aedeagus más corto que las valvas,

alrededor de un 20%, siete veces más largo que

ancho; ductus seminalis emerge desde la región

media de la funda; vesica armada por un conjun-

to de 4 espinas.

EXPANSIÓN ALAR DEL MACHO: 38 MM.

REDESCRIPCIÓN DEL HoLoTIPO: (Fig. 46)

Similar al Alotipo, pero con las diferencias que a

continuación se detallan: alas posteriores sin ló-

bulo, con una sola vena anal (A>) (Fig. 53); patas

posteriores sin pincel de pelos en la tibia y sin un

mechón de escamas en el fémur.

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

1mm

1lmm

lem

Fics. 47-50. Genitalia, pata metatorácica y venación alar del macho de Pachrophylla linearia Blanchard: Fig. 47 genitalia

en vista ventral, Fig. 48 aedeagus en vista lateral, Fig. 49 pata metatorácica y Fig. 50 venación del ala anterior y posterior.

175

Gayana Zool. 55(2), 1991

lem

FiGs. 51-53. Genitalia y venación alar de la hembra de Pachrophylla linearia Blanchard: Fig. 51 genitalia en vista dorsal,

Fig. 52 en vista ventral y Fig. 53 venación del ala anterior y posterior.

176

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

GENITALIA DE La HEMBRA (Figs. 51 y 52): Bursa copu-

latrix globosa, con un apéndice grueso y corto,,

dispuesto hacia el lado derecho en la región ante-

rior; en el sector adyacente al ductus bursae lleva

una franja subanular, espinosa, que se prolonga

hacia el extremo anterior en una serie de

estriaciones; ductus bursae 4,2 veces más largo

que ancho; cestum subigual en longitud al colli-

culum, ductus seminalis se abre dorsalmente, en

el límite anterior del cestum desde una protube-

rancia membranosa del ductus bursae; apófisis

anteriores son un 20% más pequeñas que las pos-

teriores, ambas son largas y delgadas.

FIG. 54, Mapa de distribución de la especie Pachrophylla

linearia Blanchard.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 359 mm.

HosPeDADOREs: Desconocidos.

PErIODO DE VUELO: 15 de agosto a marzo.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Chile: Laguna Verde (310

19 S) a Cautín (38% 55 S) (Fig. 54).

MATERIAL EXAMINADO (1 macho y 9 hembras):

l hembra (Holotipo), CHILI, 1843, Gay, 15.43 (MNHNP); 1

macho, Termas de Río Blanco, Cautín, 3-57 (mzUC) 1

hembra, Viña del Mar, 15-Agosto-1953, 5767 (MNHN); 1

hembra, Chiguayante, Manquimávida, S-XI[,61, Hulot:

Coll. (MZUC); 1 hembra, Llolleo, 9-12-1952 (mZUC); 1 hembra,

Valdivia, 2080 (MNHN); 1 hembra, Viña del Mar, 15-Agosto-

1953 (MNHN); macho o hembra? Represa, 1.L. 1887, Col.

Paulsen (MNHN); 1 hembra, Viña del Mar, 5-1X-1953 (MNHN);

l hembra, Col. Paulsen (MNHN;); 1 hembra, Viña del Mar,

Enero 88 (MNHN); 1 hembra, Laguna Verde, 10.X.1936, COLL

URETA (MNHN) [CHILE]

OBSERVACIONES

Esta única especie del género se caracteriza por

presentar una ancha y rectangular barra negra en

la región de la banda mediana de las alas ante-

riores, tanto en el macho como en la hembra y,

en el macho los espolones de la tibia posterior es-

tán notablemente reducidos.

La especie se encuentra en las zonas ecológi-

cas del desierto coquimbano y la selva Valdi-

viana del Norte, en este último caso hacia la re-

gión precordillerana.

Parapachrophylla n. gen.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Parapachrophylla claudiae n. sp.

DIAGNOSIS

Las alas son estrechas, largas o cortas; en algunas

especies los espolones apicales de las patas medias

están reducidos (Fig. 60); el color de las alas varía

desde castaño oscuro a claro, la superficie puede

ser homogénea o estar abigarrada de manchas.

La genitalia del macho presenta un apéndice pal-

pebriforme en el margen costal de las valvas.

Gayana Zool. 55(2), 1991

RECONOCIMIENTO.

Cabeza sin ocelos; chaetosemata presente; ante-

nas filiformes; tórax y abdomen castaño oscuros

a claros. Alas posteriores con las venas S. y Rs

unidas por una pequeña vena transversal en el lí-

mite posterior de la celda; lóbulo sobrepuesto

sobre el ala, con dos venas anales, delgado,

subtriangular que alcanza 1/2 de la longitud alar

(Figs. 57 y 61).

GenITaLIa DeL Macho: Valvas con una hendidura apl-

cal, 4,5 veces más largas que anchas; margen cos-

tal con un apéndice palpebriforme; aedeagus con

la vesica armada; saccus subtriangular.

GENITALIA DE LA HEMBRA: Desconocida.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Desde la Región Metropo-

litana (Guayacán) hasta la Décima Región (Osor-

no) (Chile) (Fig. 77).

ETIMOLOGÍA

El nombre del género dice relación al estrecho

parentesco con el género Pachrophylla, es un gé-

nero femenino.

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO P4RAPACHROPHYLLA N. GEN. BASADA EN

LA GENITALIA DEL MACHO

1 Yuxta con una proyección posterior cuadrangular

P Yuxta con una proyección posterior subtriangular con 2 apéndices cortos

o Parapachrophylla claudiae n. sp.

Parapachrophylla caliginosa n. sp.

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO P4RAPACHROPHYLLA N. GEN. BASADA EN

LA MACULACIÓN ALAR

1 Superficie dorsal de las alas anteriores castaño oscuro; región subterminal con débiles

manchas blancas; sin bandas notorias

Parapachrophylla caliginosa n. sp.

(EigsiS511509177)

Tipo

Holotipo: Macho, La Obra, Santiago,

XES51, n.n. coll. Depositado en el Museo

de Zoología de la Universidad de Con-

cepción, Concepción, Chile (MZUC)

178

Parapachrophylla caliginosa n. sp.

Superficie dorsal de las alas anteriores castaño abigarrada con manchas más oscuras; al

menos las bandas postmedial y adterminal son notorias por su color más claro

Parapachrophylla claudiae n. sp.

DESCRIPCIÓN DEL HOLOTIPO:

TAcMa cEFALICO (Fig. 75): Frente con escamas cas-

taño y castaño claro entremezcladas. Palpos la-

biales concoloros con la frente, segundo segmen-

to 1/3 y 4 veces más largo que los segmentos 1 y 3

respectivamente, segmento 3 pequeño y globoso.

Los palpos labiales están dirigidos en forma

diagonal hacia adelante y arriba, en la superficie

ventral se encuentra cubierto profusamente por

escamas largas. Antenas destruidas. Chaetosema-

ta presente; ocelos ausentes.

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

0,5 mm

FiGs. 55-57. Genitalia y venación alar del macho de Parapachrophylla caliginosa n. sp.: Fig. 55 genitalia en vista ventral,

Fig. 56 aedeagus en vista lateral y Fig. 57 venación del ala anterior y posterior.

179

Gayana Zool. 55(2), 1991

Tacma torácico (Fig. 75): Patagias con escamas

castaño y cremas; tégulas pequeñas, principal-

mente cubiertas de escamas oscuras (castaño);

mesoscutum, mesoscutellum, metascutum y me-

tascutellum con escamas castaño, concordando

con la superficie de las alas; metascutellum con

un par de penachos de escamas castaño en los

márgenes externos. Superficie ventral con esca-

mas pilosas de color crema. Patas posteriores con

un pincel de pelos en la tibia, un par de espolones

mediales y apicales; el espolón interno es dos ve-

ces más largo que el externo; superficie externa

de las patas de color castaño, superficie interna

de color crema. Fémur con un mechón de esca-

mas en el ápice distal interno del mismo.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 75): Su-

perficie dorsal de color castaño oscuro, se desta-

can débilmente unas manchas blancas en la re-

gión subterminal de la banda subterminal. Super-

ficie ventral de color castaño ceniciento.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 75): Su-

perficie dorsal y ventral blanco-ceniciento con el

margen externo castaño claro. Lóbulo blanco ce-

niciento.

Tama ABDOMINAL (Fig. 75): Superficie dorsal casta-

ño claro, superficie ventral de color crema. Seg-

mentos 3 y 4 más largos que los otros segmentos,

aproximadamente 2 veces más largos.

GENITALIA DEL MACHO (Figs. 55 y 56): Uncus delgado

y fuerte, de extremo agudo, 1/2 de la longitud de

las valvas; socius reducido; gnathos ausente; val-

vas 5 veces más largas que anchas, apicalmente

con una escotadura poco profunda, región costal

(en el 1/5 posterior) lleva un apéndice digitiforme

plano que se curva hacia el interior de la valva;

sacculus normal; yuxta cuadrangular con 4 pro-

yecciones posteriores, dos laterales delgadas y

dos centrales, digitiformes y pequeñas; saccus

subtriangular, con el borde anterior truncado;

vinculum normal. Aedeagus subigual a la longi-

tud de las valvas, 6 veces más largo que ancho;

ductus seminalis emerge del tercio anterior de la

funda; vesica armada por una fila de pequeñas es-

pinas.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 24 mm.

HemBRA: Desconocida.

180

HosPEDADORES: Desconocidos.

PERIODO DE VUELO: nOViembre al 21 de marzo.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Chile: Viña del Mar (33%

02 S) a La Obra, Santiago (33% 27 S) (Fig. 77).

MATERIAL EXAMINADO (2 machos):

l macho (Holotipo), La Obra, Santiago, XI-51, n.n. coll.

(MZUC), 1 macho (Paratipo), Viña del Mar, 21-111-1953

(MNHN) [CHILE]

OBSERVACIONES

Esta es la especie de menor tamaño del género.

Se caracteriza por el color oscuro de las alas ante-

riores y la ausencia de las bandas alares.

En relación a su distribución, está restringi-

da a las zonas ecológicas del desierto coquimba-

no, cordillera costera central y valle central. Pro-

bablemente esté asociada con alguna especie de

Rhamnaceae por lo que seguramente se en-

cuentra distribuida más al sur.

ETIMOLOGIA

El nombre específico es un adjetivo, basado en la

maculación oscura de las alas (del Latín caligino-

sus = Oscuro, sombrío).

Parapachrophylla claudiae n. sp.

(Figs. 58 - 74,76 y 77)

Tipo

Holotipo. Macho, NILAHUE, 5-1-50. De-

positado en el Museo de Zoología de la

Universidad de Concepción, Concep-

ción, Chile (MZUC).

DESCRIPCION DEL HOLOTIPO

Tacoma cerÁLICO (Fig. 76): Frente con escamas cas-

taño claro; antenas simples, con el ápice suma-

mente agudo y profusamente ciliada en su región

ventral, cilias cortas, el segmento basal similar en

color a la frente, superficie dorsal con escamas

castaño; chaetosemata presente; ocelos ausentes;

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

imm

lem

—_Aa.eb— —————— 3

FiGs. 58-61. Genitalia, pata metatorácica y venación alar del macho de Parapachrophylla claudiae n. sp.: Fig. 58 genitalia

en vista ventral, Fig. 59 aedeagus en vista lateral, Fig. 60 pata metatorácica y Fig. 61 venación del ala anterior y posterior.

181

Gayana Zool. 55(2), 1991

ojos glabros. Palpos labiales diagonalmente diri-

gidos hacia arriba, las escamas son castaño, casta-

ño claras y van dispuestas radialmente al eje de

los segmentos; segmento 1 tres veces más largo

que el segmento 3, el cual es pequeño y globoso.

Tacoma TorácicO (Fig. 76): Patagias pequeñas, con

escamas de color castaño y castaño claro; tégulas

pequeñas, con una banda de escamas más blan-

cas hacia el lado interno, por el borde externo

con escamas cremas y castaño, hacia la región

posterior con escamas piliformes Oscuras; mesos-

cutum, mesoscutellum, metascutum y metascu-

tellum con una banda central de escamas cremas,

hacia los márgenes lleva una banda más oscura

de escamas castaño y castaño claro. Tórax con

penachos de escamas reducidos. Ventralmente el

tórax lleva escamas piliformes de color crema.

Patas mesotorácicas con la tibia subigual en ta-

maño al fémur, tibia con un par de espolones apl-

cales en donde el espolón interno es 2 veces más

largo que el externo. Patas metatorácicas; fémur,

con un mechón de escamas en el ápice distal in-

terno; tibias con un pincel de pelos y 2 pares de

espolones: uno medial y otro apical, los mediales

desiguales, el interno es 4 veces el externo; los es-

polones apicales son subiguales y pequeños, simi-

lares al tamaño del espolón externo medial. To-

das las patas llevan escamas de color crema en el

fémur, en la superficie interna, y bandas de color

castaño y crema en la superficie externa.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 76): Su-

perficie dorsal castaño, abigarrada con manchas

.más ocuras. Las bandas postmedial y adterminal

notorias por su color claro. La banda postmedial

formada por dos líneas claras, mucho más noto-

ria en la región costal desde donde se dirige, en

forma diagonal, hacia el margen externo hasta

tocar la vena M) y, luego en forma más débil, se

dirige diagonalmente hacia el margen y la región

interna. El ángulo interno y el borde del ala lleva

una línea castaño oscura que alcanza 1/3 de la

longitud del ala. En la superficie ventral el color

es castaño ceniciento, siendo más oscuro hacia la

región apical.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 76): Su-

perficie dorsal y ventral blancas, con tonos casta-

ño claro hacia el margen costal y externo de la

misma.

TAGMA ABDOMINAL (Fig. 76): Castaño ceniciento.

182

Segmentos 3 y 4 subiguales (en tamaño) y más

grandes que los otros segmentos. Superficie dor-

sal con los segmentos 1 y 2 del mismo color a las

alas anteriores, segmentos 3 y 4 cremas; el resto

de los segmentos presentan un color semejante a

las alas anteriores, pero en forma menos marca-

da. Superficie ventral crema.

GenITALIa DeL Macho (Figs. 69 y 70): Uncus delga-

do, fuerte, de extremo agudo, 1/3 del tamaño de

las valvas; socius reducido; gnathos ausente; val-

vas 5 veces más largas que anchas, apicalmente

con una escotadura poco profunda; región costal

(en el 1/5 posterior) lleva un apéndice digitiforme

plano, curvado hacia la región interna de la valva

y en su borde libre lleva una serie de cerdas mar-

ginales; sacculus normal; yuxta cuadrangular,

con tres proyecciones posteriores, dos laterales

delgadas y una central subtriangular; saccus

subtriangular; vinculum normal. Aedeagus más

corto que las valvas alcanzando sólo los 3/5 de la

longitud de éstas; ductus seminalis emerge del

tercio anterior de la funda; vesica armada por

una serie de espinas.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 30 mm.

Hembra: Desconocida.

MATERIAL EXAMINADO (8 machos):

1 macho (Holotipo), NILAHUE, 5-1-50 (MZUC); 1 macho (Para-

tipo), Guayacán, 16-X-1943, Dr. Peña, COLL. URETA (MNHN);

1 macho (Paratipo), Col. Paulsen (MNHN); Viña del Mar, ene-

ro 88, Col. Paulsen, 2074 (MNHN); 1 macho (Paratipo), Viña

del Mar, 11-julio-1953 (MNHN); 1 macho (Paratipo), Quillota,

1-88; 1 macho, Laguna Verde, 10-X-1936, COLL. PAULSEN

(MNHN); 1 macho (Paratipo), NILAHUE, 5-1-50 (MZUC) 1

macho (Paratipo) (MNHN) [sin datos] (CHILE]

Larva (Figs. 62 - 72):

Largo total 23 mm., ancho máximo 2,5 mm.

Cuerpo de 13 segmentos; segmentos torácicos

con patas; 1 par de espuripedios en el noveno y

décimo tercer segmento; áreas dorsal, subdorsal y

supraespiracular con manchas castaño oscura y

verdes, las manchas oscuras normalmente van

dispuestas en la mitad posterior de cada segmen-

to, a excepción del protórax y segmentos abdomi-

nales 8, 9 y 10, donde ocupa toda la superficie

dorsal; las manchas oscuras se expanden, lateral-

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

FiGs. 62-70. Morfología y estructuras larvales de P. claudiae n. sp.: Figs. 62 y 63 cabeza en vista frontal y lateral, Fig. 64

hábito de la larva, Fig. 65 antena, Figs. 66 y 67 espinerete en vista lateral y dorsal, Figs. 68 y 69 mandíbula derecha en vista

interna y externa y Fig. 70 espuripedio en vista ventrolateral interna.

183

Gayana Zool. 5512), 1991

mente, Ocupando parte del área subdorsal y

supraespiracular; área subespiracular de color

castaño oscuro, desde el metatórax hasta el déci-

mo segmento abdominal; el pro y metatórax con

manchas verdes y oscuras, estas últimas se unen

a la mancha oscura de la región dorsal; patas y es-

puripedios amarillo verdosos; área espiracular

representada por una banda estrecha de bordes

regulares y de color amarillo, la que es interrum-

pida en el sector del espiráculo por las manchas

Oscuras.

Cabeza hipognata, oscura en la región dorsal y

verde hacia la región basal, su ancho máximo es

de 1,3 mm. y su alto de 1,1 mm: el triángulo cer-

vical es amplio y profundo, de tal manera que la

cabeza aparece con sus bordes dorsales triangula-

res; la sutura frontal alcanza los 5/6 del alto de la

cabeza; el área adfrontal es amplia y triangular

hasta el sector de la seta adfrontal 1, donde

engloba la seta para finalmente bajar en forma

estrecha, hasta tocar el c/ypeus. Clypeus en for-

ma de huso, labrum más estrecho que el clypeus

y con una invaginación poco profunda en su re-

gión media. Area ocular: la línea que une los oce-

los 1 y VI pasa entre la base de las cerdas O; y O»,

pero más cerca de O»; la línea que une los ocelos

Ill y V pasa por el centro del ocelo IV. Mandíbu-

la castaño oscura, posee 5 dientes digitiformes en

los 2/3 superiores, un diente pequeño y divergen-

te en el lado ventral, con dos cerdas subiguales en

longitud en el margen ventral; superficie externa

plana en los 2/3 distales, superficie interna con es-

cotaduras y pliegues fuertemente esclerotizados.

Complejo hipofaríngeo con palpos labiales de dos

segmentos, donde splb; es 5 veces mayor que

splb>; cerda estipular gruesa, 2 veces mayor a

cplb) y 1/3 más pequeña a cplb¡; espinerete tubu-

lar, de ápice trunco y acanalado, placa basal al-

canza 1/2 de la longitud del espinerete.

Primer segmento torácico con las cerdas l,..

y II, en la mancha oscura cervical; cerdas IV y

V se encuentran por delante y por debajo del bor-

de inferior del espiráculo, la cerda V es 1/2 más

pequeña que la IV, cerda Il ausente; cerda VI bi-

setosa. Meso y metatórax similares en quetota-

xia; cerdas 1 y II duplicadas, cerda III presente,

ubicada en el sector medio del segmento. Patas

torácicas similares entre sí; fémur y tarso subi-

guales en longitud y la tibia es alrededor de 1/3

mayor a ambos. Segmentos abdominales simila-

res en quetotaxia; la cerda 111 se encuentra delan-

184

te y sobre el espiráculo, mientras que la cerda IV

está por detrás y en la línea del límite ventral del

espiráculo. Todas las cerdas llevan un pinaculum

de color amarillo. Los espuripedios llevan

crochets uniseriales y biordinales sólo en el borde

interno.

MATERIAL EXAMINADO

2 larvas, Pucoihue (Osorno), 20/Nov./88, H. Ibarra col.

(MZUC) [CHILE]

Pura(Figs. 73 - 74):

Obtecta, de color castaño, de 9 mm. de largo y

2,25 mm. en su ancho máximo. En vista ventral

las pterotecas 2 sobrepasan por un corto trecho al

cuarto segmento abdominal; frente ancha hacia

el dorso y estrecha en la región del límite con el

clypeus-labrum; clypeus-labrum subcuadrangu-

lar; genas rectangulares; ojos semicirculares. La

espiritrompa, podotecas 1, 2 y ceratotecas sobre-

pasan a las pterotecas 2 en la región media. al-

canzando a tocar el quinto segmento abdominal:

podotecas 2 subiguales en longitud a la espi-

ritrompa; podotecas 1 y ceratotecas son más cor-

tas que las anteriores y terminan un poco más

allá del límite del cuarto segmento. En vista late-

ral son visibles las tégulas, en el límite anterior de

las pterotecas 2 en la forma de un semicírculo, los

espiráculos están presentes desde el segundo al

noveno segmento, son planos y oscuros. Cremás-

ter está compuesto por dos espinas apicales cur-

vas.

HosPEDADORES. Discaria chacaye (G. Don) Tortosa

(Rhamnaceae) “Espino blanco” o “Chacay de la

Cordillera”.

PerioDO DE VUELO: 10 de octubre al 11 de julio.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Chile: Guayacán (33% 36'

S) a Pucoihue (40% 23 S) (Fig. 77).

OBSERVACIONES

Esta especie es muy semejante externamente a P.

linearia, pero se diferencia por presentar una ma-

culación alar más notoria y color más oscuro; los

espolones apicales de la tibia posterior del macho

están ampliamente desarrollados. A diferencia de

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

IGS. 71-72. Segmentos del cuerpo de la larva de P. claudiae n p., mostrando la quetotaxia: Fig. 7 r Ss

El 11-7 12 - Sp., mostrando la q $ áci

e ma ol totaxia: Fig. 71 segmentos torácico y

185

Gayana Zool. 55(2), 1991

AGO

2mm

Fics. 73-74. Pupa de P. claudiae n. sp.: Fig. 73 en vista ventral y Fig. 74 en vista lateral.

P. caliginosa n. sp., es más grande, con alas más

estrechas e, igualmente la maculación es más no-

toria.

La especie está en el desierto coquimbano,

cordillera costera central y valle central y la selva

valdiviana (bosque de Valdivia del Norte).

En relación a su ciclo de vida es probable

que posea más de una generación al año, lo que

explicaría un prolongado período de vuelo del

adulto; por la información obtenida, tendría de-

186

sarrollo larval entre los meses de agosto y no-

viembre, mes este último en el cual ocurriría la

pupación. Las generaciones de adultos volarían

entre los meses de octubre y julio del año siguien-

te.

ETIMOLOGÍA

Dedico esta especie a mi esposa Claudia.

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

cd 76

Fics. 75-76. Imagos de: Fig. 75 Parapachrophylla caliginosa n. sp. y Fig. 76 P. claudiae n. sp., machos en vista dorsal. El

trazo indica 1 cm.

Warrenaria n. gen.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Oporabia martha Butler, 1882.

DIAGNOSIS

Este género es fácilmente reconocible porque su

especie presenta un color castaño rojizo, tanto en

las alas anteriores como en la superficie del cuer-

po y los apéndices. Las valvas son completamen-

te rectas y rectangulares.

RECONOCIMIENTO

Cabeza rojiza, sin ocelos; chaetosemata presente;

antenas filiformes y rojizas; tórax, abdomen y pa-

tas castaño rojizas. Alas anteriores con las ban-

das medial y antemedial de color castaño rojizo

intenso; alas posteriores rojizo cenicientas; lóbulo

va sobrepuesto sobre las alas y alcanza 1/3 de la

longitud del ala posterior (Fig. 81).

GENITALIA DEL MACHO: CON la valvas rectas y simples,

con una hendidura apical; uncus con una protu-

berancia deprimida cerca de su ápice; aedeagus

con dos grupos de espinas en la vesica.

187

HemBRaA: Desconocida.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Valdivia, Décima Región,

Chile (Fig. 82).

ETIMOLOGÍA

Este género está dedicado al naturalista norte-

americano de comienzos del presente siglo, W.

Warren, el género es femenino.

Warrenaria martha (Butler, 1882) n. comb.

(Figs. 78 - 82)

Oporabia martha Butler, 1882; Bartlett-Calvert,

1894, p. 521-522.

Tipo

Holotipo. Hembra, Las Zorras, Chili,

82-103, T. Edmonds. Depositado en el

British Museum (Natural History),

Londres, Inglaterra (BMNH). Vista la fo-

to del Holotipo.

Gayana Zool. 55(2), 1991

P. caliginosa

P. claudiae

FIG. 77. Mapa de distribución de las especies del género Para-

pachrophylla n. gen.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL DEL HOLOTIPO

“Las alas anteriores por encima de un gris azulejo

pálido; la mitad basilar atravesada por dos pares

de líneas negro moreno, el par interno en forma

de < , y el par externo irregularmente ondulado;

un tercer par de líneas, más separadas y con

188

manchas en forma de creciente, más allá del

centro; el área, limitada por estas últimas líneas

es morenuzca y marcada por una línea gris poco

definida; una serie arqueada de dibujos en forma

de < de color negro, sobre el disco, que terminan

cerca del ángulo externo en una mancha en for-

ma de Y rellenada con negro; una mancha cruci-

forme interrumpida, de color moreno, un poco

más allá de los dibujos anteriores, sobre la costa;

toda la superficie de las alas entre los otros dibu-

jos, atravesada por líneas lunuladas de color gris,

orilladas de blanco; una línea lunulada de color

negro en el borde; las franjas blanquizcas atrave-

sadas por dos líneas grises, la interna oscura; las

alas posteriores de un gris pálido, con una línea

oscura en el margen; el toráx blanquizco; las an-

tenas y el abdomen de un moreno rojizo; las alas

anteriores por debajo con la mitad de la costa la-

vada con moreno rosado; una mancha más oscu-

ra de este color más allá del centro limitada en ca-

da lado por color crema: la mitad interna del ala

de un blanco gris; las franjas casi como en el lado

superior; las posteriores de un blanco opaco leve-

mente teñidas de rojizo en su borde externo; el

pecho blanco: las patas por encima moreno rosa-

do, los tarsos con fajas blanquizcas; el vientre

blanquizco. Expansión de las alas, 26 milimetros”

(Bartlett-Calvert, 1894, traducido de Butler,

1882).

DESCRIPCIÓN DEL MACHO

Tacma ceratico (Fig. 80): Patagias pequeñas, cu-

biertas por escamas rojizas; tégulas pequeñas, cu-

biertas por escamas cremas, castaño y rojizas (és-

tas últimas en menor proporción). Mesoscutum,

mesoscutellum, metascutum y metascutellum cu-

biertos por escamas cremas y castaño. Patas pro-

torácicas destruidas; tibias mesotorácicas con un

par de espolones apicales, espolón interno 2 veces

más largo que el externo; fémur y tibia subiguales

en longitud; patas metatorácicas con dos pares de

espolones en la tibia, un par medial y otro apical,

en ambos el espolón interno es dos veces más lar-

go que el externo, tibias con un pincel de pelos;

fémur con un mechón de escamas en ápice distal

interno. Todas las patas llevan su superficie ex-

terna cubierta por escamas rojizas, el lado inter-

no lleva escamas de color crema.

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

FIG. 78. Macho adulto en vista dorsal de Warrenaria martha

(Butler) n. comb. El trazo indica 1 cm.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (Fig. 80): Su-

perficie dorsal de color castaño rojizo suave, don-

de destacan las bandas antemedial y medial por

su color castaño-rojizo más intenso y por su con-

figuración ondulante en el límite. La banda basal

está formada por dos líneas ondulantes, de esca-

mas castaño oscuro. La banda subterminal de co-

lor castaño se encuentra sólo en el margen inter-

no, a través de una corta y estrecha banda casta-

ño oscuro. La banda terminal adornada por líne-

as de escamas castaño oscuro, dispuestas en án-

gulos pequeños, cuyo vértice se dirige hacia la re-

gión interna. Mancha distal pequeña, subcircu-

lar, de color castaño oscuro. La banda medial

presenta, en el margen interno, una serie de esca-

mas castaño oscuras que se apoyan sobre el ala

posterior.

Superficie ventral de color castaño-rojizo

más intenso, con manchas amarillentas en el bor-

de costal de la banda subterminal y, a lo largo de

la vena Sc. Las bandas medial y subterminal mar-

cadas por una línea castaño-rojizo más intensa.

Mancha discal representada por un pequeño

punto castaño débil.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (Fig. 80): Su-

perficie dorsal y ventral de color rojizo cenicien-

to, lado ventral más notorio por el color más in-

tenso en el borde externo y en el sector medial del

ala. El lóbulo es más ceniciento que rojizo en am-

bas superficies.

189

TAGMA ABDOMINAL (Fig. 78): Superficie dorsal cu-

bierta de escamas rojizas, superficie ventral de

color crema. Segmentos 2, 3 y 4 subiguales en ta-

maño y mayores a los otros. Pigidio con una serie

de escamas piliformes, de color crema y dirigidas

hacia atrás.

lem

a |

FIGS. 79-81. Genitalia y venación alar del macho de Warrena-

ria martha (Butler) n. comb.: Fig. 79 genitalia en vista

ventral, Fig. 80 aedeagus en vista lateral y Fig. 81 venación

del ala anterior y posterior.

Gayana Zool. 55(2), 1991

GENITALIA DEL MACHO (Figs. 79 - 80): Uncus fuerte y

comprimido, mucho más ancho en el 1/4 subter-

minal del mismo, 2/3 más pequeño que las valvas;

gnathos ausente; socius reducido; valvas 4 veces

más largas que anchas, ápice con una hendidura

poco profunda; sacculus normal; yuxta subtrian-

gular; saccus triangulariforme. Aedeagus subi-

gual al largo de las valvas; ductus seminalis emer-

ge en el tercio anterior de la funda; vesica armada

con espinas.

EXPANSIÓN ALAR DEL MACHO: 28 mm.

REDESCRIPCIÓN DE LA HEMBRA

Similar al macho en los patrones de maculación

alar y colorido del tórax y abdomen, pero difiere

en que no posee un lóbulo en las alas posteriores.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPOo: 30 mm.

HospeDADORES: Desconocidos.

PERIODO DE vUELO: Enero a febrero.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Chile: Valdivia (39% 48” S

y 73% 14 W) (Fig. 82).

MATERIAL EXAMINADO (2 machos y una hembra):

l macho, Prov. Valdivia, Valdivia- CHILE, 8-1-59, E. Krah-

mer (MZUC); 1 hembra (Holotipo), Las Zorras, Chili. 82-103.

T. Edmonds (BMNH) visto la foto); 1 macho. Prov. Valdivia.

Valdivia-CHILE, 1-2-59, E. Krahmer (MZUC) [CHILE]

OBSER VACIONES

Butler en 1882 describió esta especie bajo el géne-

ro Oporabia Stephens, el cual es un sinónimo ju-

nior de Epirrita Húbner de la región Paleártica

no perteneciente a la tribu Trichopterygini.

La especie es llamativa por su color tan ca-

racterístico, castaño-rojizo.

La especie está en Chile desde la Segunda a

la Décima Región, desde el desierto intermedio

(región costera) hasta la selva valdiviana en su re-

gión costera central.

190

FIG. 82. Mapa de distribución de la especie Warrenaria

martha (Butler) n. comb.

FILOGENIA

La filogenia de las subfamilias y tribus de Geo-

metridae no ha sido abordada analíticamente en

su totalidad, existiendo sólo algunos anteceden-

tes primarios en este aspecto para la subfamilia

Ennominae gracias a los trabajos de Rindge

(1983) y McGuffin (1987).

En los Larentiinae, sólo existen algunos es-

tudios taxonómicos y nada se ha hecho para es-

tablecer las relaciones entre las tribus que la com-

ponen.

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

En la tribu Trichopterygini existe informa-

ción detallada y actualizada de los géneros

australianos: Tympanota Warren, Episteira

Warren y Sauris Guenée, aunque se conocen gé-

neros y especies de otras zonas del mundo.

En el análisis filogenético se ha usado a los

géneros Tympanota y Episteira COMO grupo ex-

terno de comparación y a Sauris como género de

apoyo para algunos caracteres, debido a que pre-

senta caracteres especializados dentro del grupo

(aunque la presencia de un coremata valvar co-

mo en Tympanota demarca una cierta “primitivi-

dad”). La polarización de los caracteres se men-

ciona a continuación y que da soporte al cla-

dograma (Fig. 83) de los taxa del grupo de géne-

ros Pachrophylla.

1. Ala anterior con 2 areolas.

La presencia de dos areolas en las alas anteriores

es un carácter observado solamente en algunos

Sterrhinae y Larentiinae (Forbes, 1948) y es poco

común dentro de los Trichopterygini, donde la

presencia de una celda accesoria es lo corriente;

esta condición también se presenta en los géneros

australianos, por lo que su presencia doble es una

sinapomorfía para el grupo estudiado.

2. Venas Sc y Rs anastomosadas a lo largo de

toda la longitud de la celda.

La comparación con el grupo externo nos indica

que el anastomosamiento de las venas Sc y Rsen

el ala posterior del macho constituye una apo-

morfía. Esta condición se ve reforzada por ser un

carácter único para Butleriana n. gen. dentro del

grupo y es una condición que se mantiene, en es-

te caso, para el macho y la hembra del género en

cuestión.

3. Ala posterior del macho con las venas M3 y

Cu; libres o pedunculadas.

Al igual que en el caso anterior, la presencia de

las venas M3 y Cu; libres o pedunculadas, repre-

senta una sinapomorfía para el grupo ya que la

condición opuesta se presenta en los tres géneros

del grupo externo.

191

4. Antenas simples no engrosadas.

El engrosamiento de las antenas fue descrito por

primera vez por Guenée (1857) en el género Rho-

palodes. Posteriormente se ha visto que la presen-

cia de este carácter es prácticamente común para

la tribu y su presencia marca a los géneros del

grupo externo como también a géneros tales co-

mo Triptila Warren, Tomopteryx Philippi de

Chile y la región Neotropical, por lo que su

ausencia marca una sinapomorfía para el grupo

de géneros Pachrophylla.

5. Lóbulo del ala posterior con una vena anal.

El lóbulo de las alas posteriores en el macho es

una autapomorfía para la tribu cuando se compa-

ra con otras entidades similares. Ahora, cualquier

modificación que esta estructura presente consti-

tuye una novedad; una de ellas es la reducción en

la venación. Al examinar el grupo externo nos

damos cuenta que la presencia de dos venas ana-

les (A) y Ay) es el carácter frecuente no sólo en él

sino que en muchos otros géneros, por lo que la

presencia de una sola vena representa una apo-

morfía para los taxa que tienen esta condición.

6. Lóbulo del ala posterior no plegado o reple-

gado sobre el ala y sobre sí mismo.

Como se dijo anteriormente, la presencia de un

lóbulo dentro de la tribu marca un estado apo-

mórfico del carácter. Ahora, si este lóbulo está hi-

perdesarrollado —como ocurre en Tympanota—

normalmente se pliega sobre el ala y sobre sí mis-

mo constituyendo ésta una condición plesiomór-

fica. La reducción de este lóbulo y por lo tanto su

no replegamiento, constituye una novedad que

tal vez represente un paso intermedio entre la

condición ancestral y la más apomórfica que su-

ponemos sería la pérdida total del lóbulo como

ocurriría en los géneros tales como Lagynopteryx

Berg (= Toxopaltes Warren) e Isosauris Warren.

7 y 8. Espolones de las patas siempre presen-

tes o reducidos.

La ausencia o presencia de un par de espolones

en las patas posteriores del macho es un carácter

Gayana Zool. 55(2), 1991

observado dentro del grupo externo, por lo que la

presencia de 2 pares es una novedad en el grupo

estudiado (7), secundariamente la reducción de

ambos pares es un paso posterior al desarrollo de

estas estructuras (8).

9. Valvasen su región ventral con una protube-

rancia o engrosamiento en su 2/3 basales.

La presencia de valvas más anchas en la región

apical que en la base es un carácter muy común

en los Trichopterygini, más evidente aún en los

géneros Sauris, Tympanota y Episteira; en cam-

bio el tercio apical igual a la base de las valvas del

grupo de géneros de la región Neotropical es un

carácter único y novedoso para la tribu, por lo

tanto su presencia marca una apomorfía.

10. Apice de las valvas con una hendidura

central profunda.

La presencia de una hendidura (a veces débil)

dentro de los Trichopterygini neotropicales es

una autapomorfía para el grupo. Este carácter no

se encuentra en Tatosoma ni en los géneros

australianos, orientales y holárticos. Fueguina n.

gen. presenta una modificación única en este sen-

tido, pues la hendidura es profunda en relación a

los otros grupos.

11. Apice de la valva sinuoso.

El ápice de las valvas en el grupo externo es re-

dondeado y amplio. La presencia de un ápice

amplio y sinuoso es un estado de carácter único

para Pachrophylla, por lo que su presencia cons-

tituye una autapomorfía del género.

12:

Margen costal de la valva con un apéndice

palpebriforme.

La presencia de procesos que nacen del o que van

en el margen costal de la valva es un carácter no

observado en el grupo externo, por lo tanto la

presencia de éste constituye una apomorfía. Asi,

la presencia de un proceso palpebriforme en Pa-

rapachrophylla n. gen. constituye una autapo-

morfía.

192

13. Yuxta con proyecciones laterales hacia la

región posterior.

La presencia de estos brazos látero-posteriores de

la yuxta probablemente están destinados a darle

mayor base de sustentación al aedeagus, pues és-

tos están directamente relacionados con las val-

vas y, sin lugar a dudas, podrían asegurar mayor

éxito en la cópula con la hembra. Su presencia

marca una sinapomorfía para el grupo dada su

ausencia en el grupo externo.

14 y 15. Valvas más largas que anchas y rectan-

gulares.

El largo de las valvas respecto a su ancho medio

es una buena medida de evaluación del desarrollo

de estas estructuras gonopodiales; así en lós géne-

ros Pachrophylla y Parapachrophylla n. gen.

ellas son muy largas, denotando su carácter derl-

vado debido a que en los grupos externos usados

la relación está bajo las 4.5 veces “más largas que

su ancho” (14). Normalmente en el grupo exter-

no las valvas tienden a ser cuadrangulares por po-

seer el ápice muy agrandado y expandido, condi-

ción que está ausente en algunos géneros del gru-

po analizado (15).

16. Uncus con un lóbulo en su región media.

La presencia de un lóbulo es un estado de carác-

ter apomórfico como lo indican los grupo exter-

nos.

17. Saccus

El estado de carácter “ahorquillado” es apomórfi-

co como lo indican los grupo externos estu-

diados.

18. Proceso saccular.

La presencia de un proceso saccular terminado

en una punta aguda es apomórfico como lo indi-

can los grupo externos.

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

19. Coremata valvar ausente.

El coremata valvar está muy desarrollado en los

géneros Tympanota y Sauris, la presencia de esta

estructura está muy relacionada a la producción

de feromonas en el cortejo con la hembra. La pre-

sencia de esta estructura, más bien, es una reten-

ción de caracteres antiguos, luego su ausencia

constituye una apomorfía.

20. Vesica armada.

El grupo externo presenta la vesica inerme, en

cambio el grupo en estudio posee ambas condi-

ciones. Sin lugar a dudas la presencia de dos gru-

pos separados de espinas en la vesica representa

una condición nueva y, por lo tanto, una apo-

morfía.

21. Cervix bursae ausente.

La genitalia de la hembra lleva una estructura

adicional, el cervix bursae; esto es típico del gru-

po externo, por lo que su ausencia es una nove-

dad para el grupo de género Pachrophylla. Su

ausencia es una condición apomórfica para este

grupo.

A continuación se entrega una lista de los

caracteres y sus correspondientes estados ple-

siomórficos o apomórficos, de acuerdo a lo argu-

mentado anteriormente (Tabla ]..

En la Tabla II se señala la matriz de caracte-

res polarizados utilizados en el estudio filogenéti-

co del complejo de géneros Pachrophylla.

TABLA 1. Caracteres polarizados en dos estados para el análisis filogenético sistemático de las especies del grupo de géneros

Pachrophylla

CARACTER PLESIOMORFICO APOMORFICO

1. Ala anterior Con 1 areola Con 2 areolas

2. Vena Sc y Rs del Libres o unidas Anastomosadas

ala posterior por una pequeña

del macho vena transversal

3. Venas M3 y Cul Anastomosadas

del ala posterior

del macho

4. Antenas Engrosadas

5. Venas del lóbulo 2 venas anales

6. Lóbulo Plegado sobre

el ala

7. Espolones de las Ausentes O 1 par

tibias posteriores presente

8. Desarrollo de los Ampliamente

espolones de las desarrollados

tibias posteriores

9. Margen ventral de Simples

las valvas

10. Apice de las valvas Redondeado

Libres o pedunculadas

Simples

| vena anal

Expandido

2 pares

Reducidos

Con una protu-

berancia central

Con una hendidura profunda

193

Gayana Zool. 55(2), 1991

(continuación Tabla 1)

CARACTER PLESIOMORFICO APOMORFICO

11. Apice de las valvas Recto Sinuoso

12. Margen costal de Simple Con apéndice

las valvas palpebriforme

13. Yuxta Cuadrangular Con proyecciones

simple lateroposteriores

14. Valvas 4.0 veces más 4.5 veces más

largas que an- largas que anchas

chas o menos

15. Valvas Subcuadrangula- Rectangulares

res o con el

ápice amplio

16. Uncus Recto Con un lóbulo

17. Saccus Subtriangular Ahorquillado

o subcuadrado

18. Proceso saccular Ausente Presente

19. Coremata valvar Presente Ausente

20. Vesica Inerme Armada por 2 grupos de espinas

21. Cervix bursae Presente Ausente

TABLA II. Matriz de los estados de caracteres polarizados del complejo de géneros Pachrophylla, basada en la Tabla Í, para

construir cladograma filogenético.

CARACTER GRUPOS EXTERNOS

Sauris Episteira Tympanota Pachrophylla Parapachrophylla Butlenana Warrenaria Fueguina

1 0 0 0 1 ] 1 l 1 Sinapomorfía

2 0 0 0 0 0 1 0 0 Autapomorfía

3 0 0 0 1 1 1 ] 1 Sinapomorfía

4 0 0 0 1 l 1 l 1 Sinapomorfia

5 0 0 0 0 0 1 0 0 Autapomorfía

6 0 0 0 0 0 1 0 0 Autapomorfía

7 0 0 0 1 l ] 1 l Sinapomorfía

8 0 0 0 1 0 0 0 0 Autapomorfía

9 0 0 0 1 1 l 0 0 Sinapomorfía

10 0 0 0 0 0 0 l Autapomorfía

11 0 0 ] 0 0 0 0 Autapomorfía

12 0 0 0 l 0 0 0 Autapomorfía

13 0 0 0 1 1 l 1 ] Sinapomorfía

14 0 0 1 l 0 0 0 Autapomorfía

15 0 0 1 1 1 1 0 Sinapomorfía

16 0 0 0 0 0 1 0 Autapomorfía

17 0 0 0 l 0 0 0 0 Autapomorfía

18 0 0 0 0 0 0 0 1 Autapomorfía

19 0 0 l 1 l l l Sinapomorfia

20 0 0 0 0 0 ] 0 Autapomorfía

21 0 0 0 ] 1 1 l 1 Sinapomorfía

194

Revisión del género Pachrophylla: PARRa, L.E.

FiGS. 83. Cladograma filogenético hipotético del grupo de gé-

neros Pachrophylla.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Efectuado el análisis filogenético, las especies

incorporadas al género Pachrophylla Blanchard,

1852, fueron agrupadas en cuatro géneros de

acuerdo a las apomorfías obtenidas para cada

uno de ellos (Fig. 83 y, Tablas 1 y Il), que de-

muestran la monofilia de cada uno de ellos. Los

géneros actualmente válidos corresponden a:

Butleriana n. gen., Fueguina n. gen., Pachro-

phylla Blanchard, Parapachrophylla n. gen. y

Warrenaria n. gen. Los géneros nuevos se crean

sobre la base de los estados de caracteres que ha-

cen distintivos a los géneros y que son comparti-

dos en las respectivas especies. Estos caracteres

fundamentalmente son encontrados a nivel de la

genitalia de uno de los sexos.

195

Las subespecies del grupo minor de Butler,

son elevadas a la categoría de especies, formando

parte del género Butleriana n. gen. Fueguina n.

gen. retiene la especie descrita por Butler y Ma-

bille (1882 y 1885) y Pachrophylla mantiene la

especie P. linearia descrita por Blanchard.

Warrenaria n. gen. es creado como género nuevo

para Oporabia martha Butler, puesto que Opora-

bia Stephens es un sinónimo junior de Epirrita

Hibner, es netamente europeo y no pertenece a

la tribu Trichopterygini (más bien Operoph-

terini), debido a que carece de las apomorfías que

definen al grupo (lóbulo en las alas posteriores,

etc.).

Prout (1910) comenta que la especie P. ocu-

lata (Mabille) es muy parecida y, por lo tanto,

que está muy relacionada a P. varians Butler. El

análisis desarrollado demuestra que la especie P.

varians es una entidad completamente diferente

de B. oculata (Mabille). Las diferencias principa-

les se presentan a nivel de la venación del lóbulo

y del ala posterior (una sola vena anal, vena Sc y

Rs anastomosadas) y en la estructura de la geni-

talia de la hembra (ausencia del noveno esternito)

de acuerdo a la comparación con el grupo exter-

no. P. varians, en cambio, resultó ser el sinónimo

senior de L. stenopterata Mabille. Probablemen-

te Prout (op. cit.) puso demasiado interés en el ti-

po de maculación de las alas anteriores, carácter

que lo desvió de la realidad taxonómica.

Butler (1882, fide Bartlett-Calvert, 1894)

describió tres subespecies para P. minor Butler,

1882, basándose fundamentalmente en la macu-

lación alar. Al revisar los tipos y otro material, se

observa que a nivel de la genitalia del macho y la

hembra hay diferencias sustanciales, las cuales

permiten elevar las subespecies a nivel de especie.

El género Butleriana n. gen. es muy homogéneo

externamente (al igual que el grupo entero) en la

maculación principalmente, pero en la estructura

de la genitalia presenta las principales diferencias

que dicen relación con la modificación del uncus,

la vesica (si está armada o no), saccus y la forma

de la bursa y signum de la hembra (presencia,

ausencia o reducción).

En el análisis filogenético el uso de Tympa-

nota Warren, Episteira Warren y Sauris Guenée

como grupo externo de comparación, se debe

fundamentalmente a la cantidad de información

que existe de ellos y a la presencia de un corema-

ta valvar que marca cierto criterio de primitivi-

dad para los géneros que lo poseen, en especial

Gayana Zool. 55(2), 1991

Tympanota y Sauris. La presencia de esta estruc-

tura es considerada vestigial, pues su uso es prác-

ticamente limitado en el macho (Krasnoff and

Roelofs, 1990) y al hecho de presentar un cervix

bursae, carácter común a los tres géneros. Sauris

fue usado como grupo externo de apoyo, pues

presenta marcadas especializaciones en su morfo-

logía alar (hendiduras en las alas anteriores y pos-

teriores) y de la genitalia (con proceso costal api-

cal, esclerotización fuerte del sacculus y el uncus

reducido y subigual en tamaño al socius).

Totosoma Butler (N. Zelandia), Trichop-

teryx Húbner y Pterapherateryx Curtis (Europa)

también presentan un proceso costal apical y en

los dos primeros es común un proceso saccular,

característica que compartirian con Fueguina n.

gen. de la región Neotropical (Chile). Es necesa-

rio destacar que Tatosoma es considerado el gru-

po hermano de los géneros neotropicales (Dugda-

le, 1980). Se han revisado especies del género

concordando con lo propuesto anteriormente, se-

ñalando que Tatosoma es más parecido a

Fueguina n. gen. a nivel de la genitalia del

macho, que a cualquier otro género.

El análisis filogénetico contó con la ayuda

de los programas PAUP y McClade, ambos se usa-

ron en la confección de árboles donde las ho-

moplasias y las simplesiomorfías estaban presen-

tes. Cuando las matrices de datos fueron lim-

piadas de estos caracteres, los cladogramas más

parsimoniosos obtenidos por ambos programas

resultaron semejantes al del método manual, con

una longitud del árbol de 22 y un índice de con-

sistencia igual a 1. El alto valor del índice obteni-

do se debe a que los caracteres innecesarios (ho-

moplasias y plesiomorfías) fueron eliminados.

El carácter 21 en el análisis filogenético fue

considerado, a pesar de que en algunas especies

se desconocía la hembra, porque se asume que el

grupo presenta marcada homogeneidad morfoló-

gica a nivel de la estructura de la genitalia de la

hembra.

Al revisar los géneros australianos, de la re-

gión Oriental, Holárticos y de N. Zelandia, es co-

mún observar en ellos un cierto patrón que se

mantiene constante —tanto en la morfología ex-

terna como en la genitalia—, existiendo poca va-

riación entre ellos y solamente algunos caracte-

res específicos permiten separarlos. Las especies y

géneros del grupo Pachrophylla mantienen esta

misma condición, observándose una cierta homo-

geneidad entre los caracteres que normalmente se

196

usan en los estudios sistemáticos de los lepidópte-

ros. Por ello, la búsqueda de apomorfías que sus-

tenten los grupos propuestos resulta particular-

mente difícil, predominando la presencia de ho-

moplasias. Este problema no es exclusivo del gru-

po, más bien es una tendencia general para los le-

pidópteros Dytrisia, a diferencia de los lepidópte-

ros más primitivos como lo planteó recientemen-

te Nielsen (1989). Probablemente, esta condición

mejorará cuando se tenga un mayor conocimien-

to de los estados inmaduros de estos grupos en

particular. A pesar de estas carencias es indu-

dable que hay pocos caracteres, pero dada la ho-

mogeneidad existente, estas pocas características

representan y tienen muchas veces un mayor pe-

so diagnóstico para definir los taxa. Además, las

entidades taxonómicas como un género, no nece-

sariamente debe estar definido por apomorfías,

pues probablemente se encuentre un taxa que ha-

ya mantenido, en su paquete de caracteres, sola-

mente plesiomorfías en comparación con otras

entidades de un grupo en particular.

En relación a los estados inmaduros, destaca

el hecho de que lo único que se conoce para el

país es la larva y pupa de P. claudiae n. sp. Esta

especie se encuentra asociada a Discaria chacaye

(Rhamnaceae) a diferencia del grupo externo (gé-

neros australianos), donde se han encontrado lar-

vas alimentándose de los hospederos de las si-

guientes familias: Sapindaceae y Meliaceae

(Sauris), Podocarpaceae y Lauraceae (Tympano-

ta). Nada se conoce de la morfología de los géne-

ros señalados, pero quizá la presencia de colores

llamativos (verde, negro y amarillo), en la larva

estudiada, represente probablemente un estado

derivado (como lo indica McGuffin, 1987, para

los Ennominae) y quizás también lo sea para el

resto del grupo de distribución neotropical. Por

esto no fue considerada en el análisis filogenético

realizado.

Las especies están distribuidas, fundamen-

talmente, entre las zonas xero e higromórficas del

país; hacia el norte se extiende por la región cos-

tera hasta alcanzar la zona del desierto interme-

dio, donde llueve frecuentemente y son abundan-

tes las cactáceas, los pastizales y hierbas anuales.

En la región higromórfica están distribuidas en la”

Selva Valdiviana, donde probablemente se en-

cuentren asociadas a fagáceas O especies vegeta-

les adyacentes. Las únicas especies que alcanzan

el extremo austral de Chile son: B. oculata (Ma-

bille) n. comb. y F.. varians (Butler) n. comb.. en la

Revisión del género Pachrophylla: PARRA, L.E.

Isla Hoste, en donde la lluvia es abundantísima.

El género más ampliamente distribuido

corresponde a Butleriana, el cual se encuentra

entre la Segunda y Duodécima Región.

Finalmente, es probable que un mejor cono-

cimiento de los estados inmaduros y sus rela-

ciones con los hospederos y parasitoides, entre-

guen fundamentos que tal vez refuercen o de-

sechen la hipótesis que se ha planteado en el pre-

sente trabajo en la forma de un cladograma.

CONCLUSIONES FINALES

En el presente trabajo se concluye que:

1. El complejo de géneros Pachrophylla sensu la-

to está conformado por los siguientes géneros:

Butleriana n. gen.

Fueguina n. gen.

Pachrophylla Blanchard, 1852

Parapachrophylla n. gen.

Warrenaria n. gen.

2. Las especies para cada uno de los géneros son:

Butleriana fasciata (Butler) n. comb., B. fu-

mosa (Butler) n. comb., B. minor (Butler) n.

comb. y B. oculata (Mabille) n. comb.;

Fueguina varians (Butler) n. comb. y FF. ce-

lovalva n. sp., Pachrophylla linearia

Blanchard; Parapachrophylla caliginosa n.

sp. y P. claudiae n. sp., y Warrenaria

martha (Butler) n. comb.

3. De las especies nominales puestas inicialmen-

te en el género Pachrophylla, destacamos:

P. varians Butler es cambiada al género

Fueguina n. gen. y Lobophora stenoptera-

ta Mabille es sinónimo junior de F. varians

(Butler) n. comb. Las subespecies de P. mi-

nor Butler son elevadas a especies del géne-

ro Butleriana nm. gen. Oporabia martha

Butler es cambiada de género porque el gé-

nero Oporabia no es válido y no pertenece

a la tribu en cuestión.

4. Los géneros se distribuyen desde la Segunda a

Duodécima Región de Chile, siendo Butleriana

197

n. gen. el de más amplia distribución. Solamente

Butleriana n. gen. y Fueguina n. gen. alcanzan el

extremo austral de Chile; los otros géneros están

distribuidos. principalmente entre la Quinta y

Décima Región de Chile.

5. Del análisis filogenético se puede concluir

que:

— Los cladogramas construidos usando los

programas PAUP y McClade concuerdan

entre sí como con el del método manual.

— El complejo de géneros Pachrophylla s. l. es

un grupo monofilético.

— El género Fueguina n. gen. es el más ple-

siomórfico y Butleriana el más apomórfico.

6. Parapachrophylla claudiae n. Sp. tiene como

hospedador a Discaria chacaye (Rhamnaceae).

La larva se presenta entre agosto y octubre y el

adulto entre octubre y julio del año

siguiente.

AGRADECIMIENTOS

Al Proyecto 20.38.14 de la Dirección de Investi-

gación de la Universidad de Concepción, por su

aporte económico en la realización de este tema.

Agradezco, además, la cooperación y ayuda

brindada por los siguientes colegas que han per-

mitido el estudio de los tipos y especímenes a su

cargo como también la información que me han

brindado: Dr. Ariel Cammouseight y Mario El-

gueta del Museo Nacional de Historia Natural

(MNHN), Dr. Malcolm J. Scoble del British Mu-

seum (BMNH), Dr. Jóel Minet del Muséum Na-

tional d'Histoire Naturelle (MNHNP) Dr. J.S.

Dudgale del Mr. Albert Research Centre; Dr.

Frederick H. Rindge del American Museum of

Natural History (AMNH), Dr. Ebbe S. Nielsen del

Research Advancing Australia (CSIRO), Dr. J.F.

Gates Clarke del Smithsonian Institution (NMNH-

SI, y al Dr. Cees Gielis de Lexmond (Holanda).

Al Museo de Zoología de la Universidad de Con-

cepción (MZUC), por el material aportado para el

presente estudio.

También no puedo dejar de agradecer la

Gayana Zool. 55(2), 1991

ayuda brindada por el Sr. Andrés O. Angulo y

sus importantes consejos, a la Dra. M.E. Casa-

nueva en el uso de los programas de inferencia fi-

logenética, a los Biólogos H. Ibarra y C. Carrasco

por el aporte de material; al dibujante José Bus-

tos y al fotógrafo Rubén Sepúlveda por las figu-

ras y fotografías de este trabajo. A todos ellos

muchas gracias.

LITERATURA CITADA

ANGULO, A.O. y M.E. CASANUEVA. 1981. Catálogo de los

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Phylogenetics systematics. John Wiley and Sons. N.Y.

439 pp.

Manuscrito aceptado en abril de 1991

199

[597

REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

. La revista Gayana dedicada al distinguido naturalista francés Claudio Gay. es el órgano oficial de la Editorial de la Uni

versidad de Concepción, Chile, para la publicación de resultados de investigaciones originales en el área de las Ciencias

Naturales. Está compuesta de las series Botánica, Zoologia y Miscelánea.

Las dos primeras aparecen en la forma de un volumen anual compuesto por cuatro números; Gayana Miscelánea es

aperiódica

. Gayana recibe trabajos realizados por académicos de la Universidad de Concepción y ocasionalmente los de otros inves

tigadores nacionales o extranjeros de prestigio, elaborados según las normas del presente reglamento. La recepción es

permanente.

- Gayana acepta trabajos escritos en idioma español o inglés. La publicación en otros idiomas deberá ser consultada pre

viamente al Director.

. El manuscrito debe ser entregado en triplicado; una de las copias llevará las figuras originales

. El Director de la revista, asesorado por el Comité de Publicación, se reserva el derecho de aceptar o rechazar el ma

nuscrito.

. El manuscrito será enviado a pares para su revisión técnica.

. La primera prueba de imprenta será enviada al autor principal para su corrección antes de la impresión definitiva. Si

ello fuere imposible o dificultoso, la corrección será realizada por el Comité de Publicación.

. Los nombres cientificos y las locuciones latinas serán las únicas que irán subrayadas en el texto. La primera vez que se

cite un organismo deberá hacerse con su nombre cientifico completo (género, especie y autor)

. Las medidas deberán ser expresadas en unidades del sistema métrico: si fuera necesario agregar medidas en otros siste-

mas, las abreviaturas correspondientes deben ser definidas en el texto. Decimales con coma. no punto (Ejemplo: 0.5)

. Las citas en el texto deben incluir nombre del autor y año [Ejemplo: Smith, J.G. (1952)]. Si hay varios trabajos de un

autor en un mismo año, se citará con una letra en secuencia adosada al año (1952a). Cuando hay más de dos autores to

dos los nombres serán citados en la primera mención [Ejemplo: Smith, J.G., P.J. Jones and W.E. Williams (1981): las re

ferencias posteriores serán: Smith et al. (1981)].

La biliografía incluirá todas y sólo las referencias citadas en el texto, dispuestas por orden alfabético del apellido del pri-

mer autor, sin número que la anteceda. La literatura botánica será citada según el B-P-H (Botánico-Periodicum-

Huntianum) y la zoológica según el Style Manual of Biological Journals

. La nomenclatura de los trabajos botánicos y zoológicos se regirá por sus respectivos códigos.

Las ilustraciones y tablas deben ser adecuadas para, una vez reducidas, ocupar un ancho de 70 mm (una columna) o 150

mm (dos columnas) y una longitud no superior a 220 mm, incluido el espacio del texto explicativo

. Los dibujos deben ser de alto contraste y deben llevar una escala para facilitar la determinación del aumento

. Las figuras se numerarán en orden correlativo con números arábigos. Las tablas de igual modo con número romanos.

Cada tabla debe llevar un título descriptivo en la parte superior

. Las fotografías se considerarán figuras para su numeración. Serán en blanco y negro, brillantes. de grano fino y buen

contraste y deben ser acompañadas de una escala para la determinación del aumento.

.En el reverso de las laminas originales se deberá indicar el nombre del autor, título del trabajo y número de las láminas.

. Adjunto al manuscrito se entregarán en forma secuencial las explicaciones de cada una de las figuras.

. El texto deberá contener: Titulo, título en inglés, nombre de los autores, dirección de los autores, Resumen, Abstract.

Keywords, Introducción, Materiales y Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones, Agradecimientos y Bibliografia.

. El título debe ir todo escrito en letra mayúscula y expresar el contenido real del trabajo. Si incluye un nombre genérico

o especifico se indicará el rango sistemático inmediatamente superior.

Si por alguna circunstancia especial el trabajo debe ser publicado en forma diferente a las disposiciones anteriores. el

autor deberá exponer su petición al Director antes de enviarlo.

RECOMENDACIONES PARA PRESENTAR LOS

MANUSCRITOS A GAYANA

1. INTRODUCCION, MATERIALES Y METODOS, RESULTADOS, DISCUSION, CONCLUSIONES,

AGRADECIMIENTOS, BIBLIOGRAFIA, son títulos y se escribirán con MAYUSCULAS

(AGRADECIMIENTOS).

2. Subtítulos: VERSALITA

3. Nombres de los géneros y de las especies (cuando encabezan un párrafo): negrita cursiva

4. Nombres de sinónimos: cursiva

5. Nombres científicos en el texto: cursiva

6. Material estudiado: ALTA (8/10)

7. Indice de nombres científicos: ALTA (8/10)

8. Enel índice de nombres científicos los nombres válidos en negrita cursiva y los sinónimos en cursiva

9. Los tipos de letra se señalan en el original como sigue:

Tipo impreso Nombre En manuscrito

Un probable origen Redonda no se señala

VALD ALTA se subraya tres veces: VALD

MATERIAL ESTUDIADO Versalitas se subraya dos veces: Material estudiado

a) crecen bien baja no se señala

Bromus berterianus Cursiva se subraya una vez: Bromus berterianus

BROMUS ALTA CURSIVA se subraya cuatro veces: BROMUS

nota: negrita se subraya con una línea ondulada: Nota:

Bromus racemosus negrita cursiva se subraya dos veces, con una línea recta y otra on-

dulada: Bromus racemosus

PAS III IA

GAYANA

ZOOLOGIA VOLUMEN 55 NUMERO 2 1991

INDICE / CONTENTS

PARRA, L.E. y H. IBARRA- VIDAL. Doina clarkei n. sp. de Oecophoridae: biología

y descripción de los estados postembrionales (Lepidoptera) .....ocococicnnccinnocnonincnnness

Doina clarkei n. sp. of Oecophoridae: biology and description of the post-

embrionic stages (Lepidoptera)

PAPAVERO, N. AND J.N. ARTIGAS. Phylogeny of the American genera of Solvi-

dae (Xylomyidae) (Diptera), with illustrations of the female spermatheca ..............

Filogenia de los géneros americanos de Solvidae (Xylomyidae) (Diptera), con

ilustraciones de la espermateca de las hembras

MOYANO, H.I. Bryozoa marinos chilenos VII: notas nomenclaturales sobre espe-

cies toral La A O innata AREA

Bryozoa marinos chilenos VII: nomenclatural notes on littoral species 1.

ARTIGAS, J.N. AND N. PAPAVERO. The American genera of Asilidae (Diptera):

keys for identification with an atlas of female spermathecae and other morpholo-

gical details. VII. 1. Subfamily Stenopogoninae Hull. A preliminary classification

A O O o Uteo ao

Los géneros americanos de Asilidae (Diptera): claves para su identificación con

un atlas de las espermatecas de las hembras y otros detalles morfológicos. VIL 1.

Subfamilia Stenopogoninae Hull. Una clasificación preliminar en tribus.

PARRA, L.E. Revisión y filogenia del genero Pachrophylla Blanchard, 1852 (sen-

su auctorum) (Geometridae: Larentiinnae: Trichopterygini) .....oooccinnnncmmmmo.

Revision and phylogeny of the genus Pachrophylla Blanchard, 109% (sensu auc-

torum) (Geometridae: Larentiinae: Trichopterygini).

Deseamos establecer canje con revistas similares

Correspondencia, Biblioteca y Canje:

COMITE DE PUBLICACION

CASILLA 2407, APARTADO 10

CONCEPCION, CHILE

EDICIONES UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CD Ba orcos

101

115

139

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ISSN 0016-531X

GAYANA

ZOOLOGIA MORI ICE NUMERO 3 1991

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS

Y DE RECURSOS NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA

Andrés O. Angulo

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR

Oscar Matthei J.

REPRESENTANTE LEGAL

Augusto Parra Muñoz

PROPIETARIO

Universidad de Concepción

DOMICILIO LEGAL

Víctor Lamas 1290, Concepción, Chile

EDITOR EJECUTIVO SERIE ZOOLOGIA

Luis E. Parra

COMITE ASESOR TECNICO

MIREN ALBERDI

Universidad Austral de Chile

SERGIO AVARIA

Universidad de Valparaiso

DANKO BRNCIC

Universidad de Chile, Santiago

EDUARDO BUSTOS

Universidad de Chile, Santiago

HuGo CAMPOS

Universidad Austral de Chile

JUAN CARLOS CASTILLA

Universidad Católica, Santiago

FERNANDO CERVIGON

Fundación Científica Los Roques, Venezuela

MÓNICA DURRSCHMIDT

Justus-Liebic Universitát Giessen, Alemania Federal

RAUL FERNÁNDEZ

Universidad de Chile, Santiago

JURKE GRAU

Universidad de Múnchen, Alemania

MARY KALIN ARROYO

Universidad de Chile, Santiago

Luis RAMORINO

Universidad de Valparaiso

BERNABÉ SANTELICES

Universidad Católica, Santiago

EDERICO SCHLEGEL

niversidad Austral de Chile

(Sy tes]

José STUARDO

Universidad de Concepción

Top STUESSY

Ohio State University, U.S.A.

GUILLERMO TELL

Universidad de Buenos Aires, Argentina

HAROLDO TORO

Universidad Católica, Valparaíso

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ISSN 0016-531X

CIAWAWNA

ZOOLOGIA VOLUMEN 55 NUMERO 3 1991

CONTENIDO / CONTENTS

MUÑOZ, M.R.; MOYANO, H.I. Y J.M. CANCINO. El complejo Membranipora

(BryozoaChelostomata Ama 203

The Membranipora complex (Bryozoa: Cheilostomata, Anasca) from Chile.

ROSAs, M.A. Y M.E. CASANUEVA. Acaros del polvo de habitación: Acarus farris

(Oudemans, 1905) redescripción de un nuevo registro para Chile (Acari: Acari-

elencos IS

House dust mites: Acarus farris (Oudemans, 1905) redescription of a new record

for Chile (Acari: Acaridae).

CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO. Contribución al conocimiento del género Co-

pitarsia Hampson, 1906 (Lepidoptera: Glossata: Cucullinae) c...ninnnninnnnnnonnn... 227

Contribution to the knowledgment of the genus Copitarsia Hampson, 1906 (Le-

pidoptera: Glossata: Cucullinae).

ARTIGAS, J.N. Y N. PAPAVERO. The American genera of Asilidae (Diptera): keys

for identification with an atlas of female spermatheca and other morphological

details. VII. 2. Subfamily Stenopogoninae Hull - Tribes Acronychini, Bathypogo-

nini (with description of a new genus) and Ceraturgini, and a catalogue of the

INCOtOPICAMSPECIES E: AA A A orita 247

Los géneros americanos de Asilidae (Diptera): claves para su identificación con

un atlas de las espermatecas de las hembras y otros detalles morfológicos. VII. 2.

Subfamilia Stenopogoninae Hull - Tribus Acronychini, Bathypogonini (con

descripción de un nuevo género) y Ceraturgini, y catálogo de las especies neotro-

picales.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION - CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de ellos”,

CLAUDIO GA Y, Hist. de Chile, 1:14(1848)

Portada:

Aedeagus en vista dorsal de Carebaricus rionegrensis

(Lamas) (ver pág. 252)

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DI

EDITORA ANIBAL PINTO S.A,,

MAIPU 769. CONCEPCION:CHILI

EN EL MES DE OCTUBRE DE 1991

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

PARA EDICIONES UNIVERSIDAD DI

CONCEPCION

Gayana Zool, 5513): 203-211, 1991

ISSN 0016:531X

EL COMPLEJO MEMBRANIPORA (BRYOZOA: CHEILOSTOMATA,

ANASCA) EN CHILE

THE MEMBRANIPORA COMPLEX (BR YOZOA: CHEILOSTOMATA,

ANASCA) FROM CHILE

O la * HA a GON

Mauricio R. Muñoz B., Hugo I. Moyano G. — y Juan M. Cancino

RESUMEN

Cuatro especies del género Membranipora han sido descritas

para la costa de Chile: M. Ayadesi Jullien, 1888; M. isabelle

ana (VOrbigny, 1847); M. membranacea (Linnaeus, 1767) y

M. tuberculata (Bose, 1802), Los caracteres taxonómicos pa

ra estas especies han sido la presencia, ausencia o desarrollo

de espinas en los zooides y el grado de calcificación. Sin em

bargo, colonias del genero Membranipora recolectadas en dos

localidades de Chile (33% y 36% S) muestran una combinación

de caracteres taxonómicos de diferentes especies en una mis

ma colonia. Además, los rasgos morfométricos de las larvas

recolectadas en los mismos sitios sólo permitieron diferenciar

estados de desarrollo y no muestran diferencias que indiquen

la presencia de distintas especies, Nuestros datos y la revisión

del estatus taxonómico de las especies del género Membrani

pora, sugieren la presencia en Chile de: M, membranacea, M.

tuberculata y M. isabelleana, siendo esta última una especie

muy polimorfa, Nosotros no observamos material correspon

diente a M. membranacea, especie que ha sido citada sólo pa

ra aguas cercanas al estrecho de Magallanes,

PALABRAS CLAVES: Membranipora, Bryozoa, Anasca, Taxo

nomía, Pacífico Sur-oriental.

* , 5 es ñ .

Departamento de Ecología, Pontificia Universidad Ca

tólica de Chile, Casilla 114-D, Santiago.

*. P £ ” ,

Departamento de Zoología, Universidad de Concep

ción, Casilla 2407, Concepción.

203

ABSTRACT

Four species of Membranipora have been reported for

Chilean coasts, namely: M. hyadesí Jullien, 1888; M.

isabelleana (VOrbigny, 1847); M. membranacea (Linnaeus,

1767) y M. tuberculata (Bose, 1802). The taxonomic

attributes used to identify these species include the presence

or absence of spine as well as both the degree of calcification

and spine development, However, specimens of

Membranipora collected in two localities of Chile (33% and

36% S) showed within single colonies morphological

attributes of more than one species. Furthermore, a

morphometric analysis of larval samples showed only a

pradient of developmental stages but failed to show any

differences that could indicate the presence of different

species, The data and the review of the taxonomic status of

the species of Membranipora included in the present study

suggest that the following species of this genus are present in

Chile: M. membranacea, M. tuberculata and M. isabelleana,

the latter being a very polimorphic one, We did not observed

material of M.membranacea, species that have been reported

only for waters near the Megellan Strait.

Keyworbs. Membranipora. Bryozoa, Anasca, Taxonomy.

South eastern Pacific,

INTRODUCCION

Recientemente se ha demostrado que caracteres

tradicionalmente utilizados en taxonomía de

briozoos de la familia Membraniporidae, tales co-

mo la presencia de espinas, pueden ser inducidos

por relaciones interespecíficas (Yoshioka, 1982;

Gayana Zool. 5513), 1991

Harvell, 1984). Esto llevó a Yoshioka (1982) a

plantear que en la costa oeste de EE.UU., las es-

pecies Membranipora villosa y M. serrilamella se-

rían morfos conespecificos de M. membranacea.

El hecho que la presencia de espinas en

Membranipora membranacea puede ser inducido

en algunos zooides del zoario, por la acción de un

depredador, permite dudar de este carácter como

determinante en términos taxonómicos

(Yoshioka, 1982; Harvell, 1984, 1986). De esta

manera la validez de aquellas especies de

Membranipora que son discriminadas sobre la

base de la presencia o ausencia de espinas o del

desarrollo de éstas, debe ser revisada con el obje-

to de hacer precisiones sobre su estatus taxonó-

mico.

La situación taxonómica de las especies de

Membranipora, descritas para Chile, puede ser

planteada como sigue. Moyano (1966), en su re-

visión del género para la costa de Chile, alude a

problemas en su sistemática y menciona que

d'Orbigny (1847) para Flustra ¡isabelleana y

Hincks (1880) para M. villosa describen espinas

distales quitinosas y pared frontal con espinas pl-

liformes. Viviani (1969) reporta el haber observa-

do zoarios de M. hyadesi Jullien (1888) con agu-

das espinas distales quitinosas, rasgo que es ca-

racterístico de M. villosa, y concluye que esta úl-

tima es una especie muy polimorfa. Este autor,

sin embargo, no valida la prioridad de la descrip-

ción de Hincks (1880) por sobre la de Jullien

(1888).

M. membranacea carece de espinas y sola-

mente ha sido citada para Punta Arenas por Cal-

vet (1904) y de muestras de profundidad (258

brazas) por Canu y Bassler (1928). No existe nin-

gún otro registro de esta especie para la costa de

Chile.

En el presente trabajo se describen aspectos

taxonómicos de las especies del genero Membra-

nipora para Chile y se hace un análisis morfológi-

co de larvas y zooides tendientes a esclarecer si-

nonimias y prioridad de nombre en estas espe-

cies.

MATERIALES Y METODOS

El material estudiado en el presente trabajo pro-

viene de 2 áreas. Larvas y zoarios de diversos ta-

maños, incrustando frondas de Macrocystis pyri-

fera, fueron recolectadas en Lirquén (36% 42” S;

72% 58” O), Cocholgúe (36% 55” S; 72% 58” O) y

Los Morros (36% 31” S, 72% 57' O) (Bahía de Con-

cepción). Las larvas se recolectaron con una red

de plancton de arrastre superficial con una malla

de 100 um, durante los años 1983-1984.

La segunda área fue Punta de Tralca (339

24'S, 71” 42 O). Aquí se recolectó larvas recién

asentadas, ancéstrulas y colonias de 3 a 4 zo-

oides, sobre frondas de Lessonia trabeculata, du-

rante febrero-mayo de 1989.

Todo el material fue fijado en formaldehído

FIGURA 1: (A), Larva cifonauta de Membranipora isabelleana. A, corresponde al borde interior; P, al borde posterior; L, al

borde basal. (B), Larva cifonauta de Membranipora isabelleana recién asentada. Ws, corresponde al ancho máximo; Ls al

largo máximo; Bs a la diagonal, esta última equivale a la longitud L en larvas de vida libre.

El complejo Membranipora: MUÑOZ, R. et al.

4% neutralizado con bórax y conservado en al-

cohol 70%. Los dibujos fueron hechos con ayu-

da de cámara clara. Las mediciones hechas para

las larvas corresponden a proporciones conside-

radas como caracteres taxonómicos por Mawata-

ri e Ito (1972) y Mawatari (1975). Estas son la

longitud basal (L), anterior (A) y posterior (P) de

larvas en el plancton. Para larvas recién asenta-

das se midió el ancho máximo (Ws), el largo má-

ximo (Ls) y la diagonal (Bs) que corresponde a la

longitud basal (L) de la concha (Fig. 1).

RESULTADOS

Los resultados que se detallan a continuación

corresponden por una parte a la revisión

bibliográfica referente a aspectos sistemáticos de

las especies de Membranipora para Chile y por

otra, a los caracteres morfológicos del material

recolectado por nosotros.

1) FamiLIa MEMBRANIPORIDAE BUsK, 1854

Osburn (1950) caracteriza a la familia Membrani-

poridae en los siguientes términos: Opesia casi del

mismo tamaño que el frente zoecial que está to-

talmente cubierto por una membrana frontal.

Gimnocisto reducido o ausente. El Criptocisto

puede presentarse apenas visible u ocupar casi la

mitad de la opesia. Sin ovicelas y raramente con

avicularias y vibracularias. Ausencia de espinas

en los bordes laterales de la pared, pero con tu-

bérculos bajos, coronados o no por espinas quiti-

nosas en los extremos distales de cada zooide.

2) GÉNERO MEMBRANIPORA BLAINVILLE, 1830

Zoario incrustante y unilaminar con zooides de

forma rectangular. Paredes del zooide poco calci-

ficadas con tubérculos o pliegues distales que ter-

minan en espinas quitinosas. Las paredes latera-

les carecen de espinas en su borde libre. Opesia

cubierta completamente por una pared frontal

membranosa transparente. Pared frontal lisa o

con espinas quitinosas en su superficie externa.

Criptocisto muy poco desarrollado y cuando pre-

sente, en forma de un reborde sinuoso o con espi-

nas que miran hacia el centro de la opesia. Sin

ovicelas, avicularias ni vibracularias.

205

3) DIAGNOSIS DE LAS ESPECIES

a) Membranipora ¡sabelleana (1Orbigny, 1847)

(Fig. 2).

Flustra isabelleana d'Orbigny, 1842: lám. 8. f.

20-21.

Membranipora villosa Hincks 1880:84; Ro-

bertson, 1908:269-275; O'Donoghue,

1923:26; Osburn, 1950:22

Membranipora hyadesi Jullien, 1888:76, lám.

6, F.1,lám. 8, figs. 5-6; Calvet, 1904:13;

Moyano, 1966:9-12; 1974:1-41;

1982:81-96; Moyano y Bustos, 1974:

171-179.

Zoario incrustante y unilaminar. Zoecias

alargadas, estrechas e irregulares, 3 a 5 veces más

largas que anchas, dispuestas en filas alternadas.

Pared frontal membranosa, translúcida, lisa o cu-

bierta por pelos o espinitas quitinosas de inser-

ción principalmente lateral. Criptocisto en forma

de reborde dentado, bien desarrollado (ca. 1/10

ancho de la opesia) en zooides “adultos” y/o bien

calcificados, pudiendo ser difícil de observar en

zooides “jóvenes”. Tubérculos laterales distales

que varían, presentándose como un continuo

entre: bajos y redondos; con una espina baja, có-

nica y quitinosa en su extremo; cónicos termina-

dos en una larga espina aguda quitinosa, que se

continúa desde un pliegue calcificado.

En la zona de origen de dos nuevas corridas

zoeciales, a partir de una preexistente, pueden

aparecer 3 espinas, de las cuales la central suele

transformarse en una estructura “gigante”, cóni-

ca, hialina, no calcificada. Ovicelas, avicularias,

vibracularias ausentes (Fig. 2).

b) Membranipora tuberculata (Bosc, 1802)

(Fig. 3).

Flustra tuberculata Bosc (pars), 1802:118.

Flustra tehuelcha d'Orbigny, 1839:17

¿Flustra inca? d'Orbigny, 1839:18

Flustra peregrina d'Orbigny, 1839:18

Membranipora tuberculata Busk, 1858:126;

Osburn 1950:23; Moyano, 1966; 1973;

1983: Redier € d'Hondt, 1976; Ryland,

1977:56; Mawatari £ Mawatari, 1981.

Membranipora tehuelcha: Kluge, 1914:664.

Nichtina tuberculata: Harmer, 1926:208.

Zoario incrustante y unilaminar. Zooides

Gayana Zool. 55(3), 1991

FIGURA 2: Distintos morfos conespecificos de Membranipora isabelleana. (A), pared frontal lisa, tubérculos distales termi-

nados en pequeñas espinas y criptocisto bien desarrollado. (B), “torres” disto-centrales de gran tamaño, tubérculos distales

bajos y redondos, pared frontal lisa. (C), pared frontal con espinas piliformes, espinas distales agudas. (D), ancéstrula y pri-

mer zooide.

rectangulares. Opesia más o menos ovalada, cu-

bierta por una membrana frontal translúcida.

Opérculo no totalmente diferenciado de la

membrana frontal excepto en su borde libre. Pa-

redes distal, proximal y laterales bien calcifica-

das. Entre la pared proximal y distal de dos zo-

oides contiguos se produce un pliegue de direc-

ción distal, el que puede variar considerablemen-

te según su calcificación y desarrollo, desde un

par de tubérculos hasta una barra o plataforma

resultante de su unión. Criptocisto de moderado

o considerable desarrollo, de borde espinoso. Ovi-

celas y avicularias ausentes, como también espi-

nas frontales y marginales.

4) CLave

Se presenta la siguiente clave para diferenciar las

especies del género Membranipora de la costa de

Chile. Se incluye en ella a M. membranacea (Lin-

naeus, 1767) ya que ha sido citada por Calvet

(1904) y Canu y Bassler (1928) para Chile, a pe-

sar de que no aparece en las muestras estudiadas.

El complejo Membranipora: MUÑOZ, R. et al.

FIGURA 3: Membranipora tuberculata. (A), ancéstrula. (B), zooides con tubérculos distales bien calcificados.

CLAVE PARA LAS ESPECIES DEL GENERO MEMBRANIPORA EN CHILE

(Modificada de Moyano, 1966)

l.. Zooides rectangulares con criptocisto en forma de un reborde sinuoso de variado de-

sarrollo, difícil de observar en zooides de zoarios jóvenes

Zooides rectangulares sin criptocisto o éste es vestiglal ..o.oononncccncninc..... M. membranacea

Pared frontal lisa o revestida con espinitas quitinosas poliformes. Extremo distal con tu-

bérculos redondeados o con largas espinas agudas, o una combinación de dichos caracte-

res. Ocasionalmente “torres” hialinas en los inicios de una serie de zooides

A E M. isabelleana

5) VARIACIONES MORFOLÓGICAS DE M. /SABELLEANA

Se describen a continuación las diferentes morfo-

logías encontradas para larvas y zooides de M.

isabelleana.

a) Larvas

En las larvas recolectadas y medidas no fue po-

sible detectar ninguna discontinuidad cuantitati-

va ni cualitativa. Por consiguiente, siguiendo los

criterios de Mawatari (1975) se supuso que todas

las larvas examinadas pertenecían a una misma

especie. La similitud entre la longitud larval (L) y

la de las ancéstrulas (Bs) apoya el supuesto que

las larvas de nuestras muestras corresponden a

M. ¡sabelleana. Esta larva es una cifonauta que

207

Criptocisto de borde irregularmente espinoso. Rincones zoeciales distales con fuertes tu-

bérculos bien calcificados y desprovistos de espinitas quitinosas

A M. tuberculata.

presenta un par de conchas triangulares transpa-

rentes y sin ninguna coloración, excepto en su

parte basal. La parte apical es distintivamente bi-

lobular y cada lóbulo es moderadamente redon-

deado. La parte anterior es de mayor longitud y

menos redondeada que la posterior (Fig. 1.A). El

borde basal presenta una pigmentación en tonos

de café y puede estar ornamentado con una serie

de más de 50 tubérculos.

Las relaciones entre L-A y L-P pueden ser

interpretadas como diferentes estados de de-

sarrollo. Se sugiere que en los especímenes pe-

queños L tiende a ser similar a A y P, pero en los

mayores L tiende a ser mucho más grande. Ade-

más A siempre excede a P de tal manera que la

concha parece variar de una forma de triángulo

isósceles a uno escaleno (Fig. 4).

Gayana Zool. 5513), 1991

0.5 0.6 0.7 0.8 0.9 (mm)

FIGURA 4: Variación en las dimensiones del tamaño de la

concha de Membranipora isabelleana, medidas en 54 larvas.

A corresponde al borde interior; P, al borde posterior; L, al

borde basal. Cada trazo sobre un punto indica una sobreposi-

ción.

Cuando la larva cifonauta se asienta sobre

un sustrato, las conchas se abren a lo largo del

margen posterior y basal, luego los bordes ante-

riores se sobreponen el uno al otro (Fig. 1.B). Las

dimensiones de la larva asentada presentan muy

poca variación (Tabla 1), aun menor que aquélla

asociada a larvas libres. Esto último si se tiene en

cuenta que Bs. corresponde a L (Fig. 4 y Tabla 1).

TABLA 1. Dimensiones en mm para larvas recién asentadas

de Membranipora isabelleana (n= 96).

VALOR MINIMO VALOR MAXIMO x + DE

—_ a —_--—__Q_oQ_mzo_—__oo= a

Bs 0.67 0.77 0.72 2 0.02

Ws 0.83 0.94 0.90 = 0.02

Ls 0.59 0.70 0.66 + 0.02

ÓFK—_—_——coo + QA QA

Nota: Bs. corresponde a la diagonal; Ws, al ancho máximo;

Ls, al largo máximo (ver Fig. 1).

La metamorfosis iniciada luego del asenta-

miento larval culmina con una ancéstrula doble.

la cual se completa cuando sus dos polípidos co-

mienzan a capturar alimento. Presentamos en la

Fig. 5 una reconstrucción de una secuencia de

metamorfosis, la cual termina con el complejo

ancéstrula, esto es, la ancéstrula doble y las ye-

mas periféricas que ella ha generado.

FIGURA 5: Secuencia reconstruida de la metamorfosis de una larva asentada de Membranipora isabelleana.

El complejo Membranipora: MUÑOZ, R. et al.

b) ZooIbEs zoario se encontró zooides con tubérculos calcá-

reos redondeados (una característica atribuida a

Se observó que en zoarios caracterizados por Zo- M. hyadesi por Jullien (1888)) y además zooides

oides periféricos con pared frontal lisa, se presen- con largas y aguzadas espinas en sus extremos

taban algunos zooides con espinas quitinosas distales (una característica atribuida a M. ¡sa-

agudas en sus bordes distales. Así, en un mismo belleana por d'Orbigny (1847) (Fig. 6).

FIGURA 6: Variación en la morfología de Membranipora isabelleana. (A), zooides en (ed) con espinas distales agudas y espl

nas piliformes en la pared y zooides en (pl) con tubérculos redondeados y pared lisa. (B). zooides en (p) con espinas distales

largas y agudas y pared frontarl pilosa: en (pl) idem A: en (ce) zooides en los que se combinan los caracteres. (C). tubérculos

bajos y redondeados. también terminados en largas y agudas espinas. (D). estructuras cónicas de tamaño “desmesurado”

(torres) y tubérculos distales pequeños terminados en pequeñas espinas quitinosas.

209

Gayana Zool. 55(3), 1991

También se encontró material en el cual

dentro de un mismo zoario habían áreas con zo-

oides de espinas aguzadas en sus extremos y pa-

red frontal con espinas, junto con áreas de zo-

oides con tubérculos redondeados y pared frontal

lisa (Fig. 6). En este último caso entre ambas áre-

as se observó zooides con características combi-

nadas, esto es: largas espinas agudas y pared fron-

tal lisa; tubérculos redondeados con una pequeña

espina quitinosa y pared frontal con espinas pili-

formes.

Se comprobó también la presencia de zo-

arios con “desmesuradas” estructuras cónicas y

hialinas en la zona central de formación de una

nueva serie de zooides (Fig. 6). Entre estas

“torres” se observaron tubérculos bajos y redon-

deados, además de algunos terminados en pe-

queñas espinas.

DISCUSION

La descripción original de d'Orbigny y el es-

quema entregado (1847:18, lám. 8, figs. 20-21

(1842)) para Flustra isabelleana, permiten identi-

ficar con gran confianza parte del material reco-

lectado por nosotros como M. isabelleana. Trein-

ta años después Hincks (1880) describe M. villo-

sa. Esta descripción es más extensa y precisa que

la de d'Orbigny, pero claramente se refiere a la

misma especie a pesar de la distancia entre los si-

tios de ambas recolecciones (California para M.

villosa y Patagonia para M. isabelleana). Así, re-

cientemente Moyano (1966) incluye entre los si-

nónimos de M. isabelleana a M. villosa.

En 1888, Jullien describe M. hyadesi, a la

cual se ajusta sin problema parte del material ob-

tenido en el presente estudio. Sin embargo,

nuestro material permitió observar zoarios que

presentan caracteres en un continuo de formas

entre M. isabelleana (Orbigny), 1847 (= M.

villosa Hicks, 1880) y M. hyadesi Jullien, 1888,

incluso combinando en un mismo zooide dichos

rasgos.

La sugerencia hecha por Y oshioka (1982) re-

ferente a que las espinas inducidas por depreda-

ción en M. membranacea la relacionarian con M.

villosa y M. serrilanella queda pendiente. Si estas

dos últimas fueran morfos conespecíficos de M.

membranacea, luego por la sinonimia presentada

en este trabajo para M. villosa también M. isa-

belleana podría ser un morfo conespecífico de M.

210

membranacea (Linnaeus), 1767. Sin embargo el

no haber observado zoarios que se ajusten a la

descripción de M. membranacea no permite en

este trabajo establecer tales relaciones. Así las es-

pecies de Membranipora para Chile corresponde-

rían a M. tuberculata, M. membranacea y una es-

pecie muy polimorfa cuyo nombre válido por

prioridad sería M. isabelleana (4'Orbigny), 1847.

Si se comparan los aspectos morfológicos de

larvas y zooides de M. ¡sabelleana aquí reseña-

dos, con lo descrito para otras especies de

Membranipora, la semejanza es muy alta. La for-

ma e incluso la ornamentación de la concha de la

larva de M. isabelleana es muy similar a la de las

larvas de M. serrilamella (Mawatari e Ito, 1972;

Mawatari 1975) y a las de M. villosa (O'Do-

noghue, 1926). Además, la secuencia de meta-

morfosis descrita por Mawatari (1975) para M.

serrilamella es muy similar a la observada por no-

sotros para M. isabelleana.

Sin embargo, esta similitud no es tal en

cuanto al tamaño de las larvas. En M. serrila-

mella L alcanza 0.60 mm (Mawatari 8 Ito, 1972)

mientras que en M. villosa L no supera 0.50 mm

(O'Donoghue, 1926). No obstante L en M. ¡sa-

belleana alcanza valores muy superiores. No po-

demos explicar el pequeño tamaño de las larvas

observadas por O'Donoghue (1926) para M.

villosa (especie que en el presente trabajo se con-

sidera en sinonimia con M. ¡sabelleana). Sin em-

bargo, podría pensarse que las larvas observadas

por O'Donoghue eran muy “jóvenes”.

Finalmente, el tamaño de las larvas de M.

isabelleana es muy similar al descrito para M.

membranacea por Atkins (1955) y por Ryland

(1964). Pero esta última presenta la concha orna-

mentada con líneas de color café (Ryland 1964),

rasgo no observado en las larvas de M. isabelle-

ana.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos la colaboración durante los

muestreos de César Villalba y Alvaro Palma.

Patricio Stanley colaboró en la confección de las

figuras. El primer autor agradece las sugerencias

iniciales al trabajo del Dr. Jorge Artigas y las de

un revisor anónimo. Este trabajo fue parcialmen-

te financiado por el Proyecto FONDECYT

0616/89. M.R. Muñoz B. es becario de Funda-

ción Andes.

El complejo Membranipora: MUÑOZ, R. et al.

LITERATURA CITADA

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211

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Gayana Zool. 55(3): 213-226, 1991 ISSN 0016-531X

ACAROS DEL POLVO DE HABITACION: 4CARUS FARRIS

(OUDEMANS, 1905) REDESCRIPCION DE UN NUEVO REGISTRO PARA

CHILE (ACARI: ACARIDAE)

HOUSE DUST MITES: ACARUS FARRIS(OUDEMANS, 1905)

REDESCRIPTION OF A NEW RECORD FOR CHILE (ACARI:

ACARIDAE)

3 * 5 *

Mario A. Rosas” y María E. Casanueva

RESUMEN ABSTRACT

La especie Acarus siro Linné, 1758, ha sido recolectada en un The species Acarus siro Linné, 1758 has been recollected

porcentaje significativo de muestras de polvo de habitación from a significant number of house-dust samples in the VIII

en la Octava Región, Chile. Sin embargo, la especie Acarus Region, Chile. However Acarus farris (Oudemans, 1905),

farris (Oudemans, 1905), que ha sido incluida en el “complejo which has been included in the “Acarus complex”, among

Acarus” junto con las siguientes especies que no han sido di- the following species: Acarus inmobilis Griffiths, 1964; Aca-

ferenciadas adecuadamente: Acarus siro Linné, 1758; Acarus rus Siro Linné, 1758; and Acarus gracilis Hughes, 1957, had

inmobilis Griffiths, 1964 y Acarus gracilis Hughes, 1957, no not been previously reported for house-dust samples in Chile.

había sido registrada para el país. A total of 64 house-dust samples from 9 different locali-

Un total de 64 muestras de polvo de habitación, proce- ties in the VIII Region, Chile were examined. This study re-

dentes de 9 localidades de la VIII Región, Chile, fueron anali- ports the first valid record of the species Acarus farris for

zadas cualitativamente. Se señala la presencia de Acarus Chile. A detailed redescription of this species with brief re-

farris (Oudemans, 1905) como primer registro válido para el cognition diagnosis for all postembrionic instars and pictures

país y se entrega una detallada redescripción, en la cual se taken with the aid of a Photomicroscope and the Scanning

incluyen breves diagnosis de reconocimiento de todos los es- Electronic Microscope (SEM) are given.

tados de desarrollo, apoyada con esquemas originales y fo-

tografías obtenidas al Fotomicroscopio y Microscopio KEYWORDS: Acari, Acaridae, Acarus farris, House-dust, Chi-

Electrónico de Barrido (SEM). le.

PALABRAS CLAVES: Acari, Acaridae, Acarus farris, polvo de

habitación, Chile.

INTRODUCCION

En el mundo se han realizado numerosos traba-

jos relacionados con ácaros presentes en el polvo

de habitación, en especial con los pertenecientes

a la familia Pyroglyphidae (Hughes, 1973; Furo-

mizo and Mulla, 1971; Hughes, 1961; Fain,

* Depto. de Zoologia, Universidad de Concepción, Ca- 1964; Araujo, 1974; Sánchez, Charlet y Mulla,

silla 2407, Concepción, Chile. 1979; Castagnoli, Liguori y Nannelli, 1983), don-

213

Gayana Zool. 55(3), 1991

de se mencionan las especies Dermatophagoides

farinae Hughes, 1961 y Dermatophagoides pte-

ronyssinus (Trouessart, 1897) como importantes

agentes causantes de problemas alérgicos en el

ser humano.

La información existente sobre la fauna aca-

rológica del polvo de habitación para Chile es es-

casa. Se destacan los trabajos de Muñoz (1981),

quien registra la presencia de D. pteronyssinus en

la ciudad de Santiago; Artigas y Casanueva

(1983), quienes determinan la presencia y distri-

bución geográfica de 21 especies de ácaros del

polvo de habitación a lo largo del país y, el traba-

jo de Casanueva y Artigas (1985) en el cual cal-

culan una relación de similitud entre las diferen-

tes especies de ácaros del polvo por localidad

geográfica, características abióticas y la estación

del año en la cual se efectuó la recolecta de las

muestras. Artigas y Casanueva (op. cit.) descri-

ben morfológicamente el macho y la hembra de

Acarus siro Linné, 1758; sin embargo, existen

otras especies incluidas en el “complejo Acarus”

que no han sido diferenciadas adecuadamente y

no han sido previamente registradas para el país.

Las especies que conforman este complejo son:

Acarus siro Linné, 1758; Acarus farris (Oude-

mans, 1905); Acarus gracilis Hughes, 1957, y

Acarus inmobilis Griffiths, 1964.

Griffiths (1964) entrega una revisión detalla-

da del género Acarus L. (1758) (Acari, Acaridae)

y señala algunos caracteres que hacen posible la

diferenciación de las especies incluidas en este

complejo, haciendo énfasis que el estudio de los

hipopi simplificaría bastante la identificación de

ellas, menciona, además, que si bien la dieta ali-

menticia está directamente relacionada con el ta-

maño y pectinación principalmente de las setas

dorsales, en Acarus inmobilis Griffiths, 1964, la

dimensión de estas setas es siempre superior a la

de otras especies y es independiente al tipo de

dieta alimenticia a la que ha sido expuesta.

En el presente estudio se entrega el primer

registro de Acarus farris (Oudemans, 1905) para

el polvo de habitación en Chile, incluyendo una

redescripción de los estados postembrionales y,

sin ser el objetivo primordial, se realiza una breve

comparación con una especie próxima, Acarus si-

ro Linné, 1758, para destacar las variaciones

morfológicas más relevantes. Se espera que futu-

ros trabajos entreguen la distribución geográfica

y estacional de Acarus farris, así como también

para otras especies posibles de registrar en el pol-

vo de habitación en Chile.

MATERIALES Y METODOS

OBTENCIÓN Y MANEJO DE LAS MUESTRAS

Un total de 64 muestras de polvo de habitación,

obtenidas mediante barrido, fueron recolectadas

en 9 localidades de la VIII Región, Chile. Las

muestras se estudiaron bajo microscopio estere-

oscópico con 50 aumentos al momento de su re-

cepción y, nuevamente 20 días después para per-

mitir la eclosión de los huevos presentes en ellas.

Para la mantención de las muestras se siguió

el procedimiento señalado por Artigas y Casa-

nueva (1983) y, al término del primer periodo de

incubación se retiraron ejemplares adultos, los

cuales se dispusieron en frascos de vidrio de 5 cm

de alto por 2 cm de diámetro que contenían el

alimento preparado en base a una proporción de

1:1 de harina de pescado y levadura. Para reali-

zar las determinaciones específicas y los estudios

morfológicos comparativos se montaron indivi-

duos adultos e inmaduros en preparaciones per-

manentes, las cuales fueron depositadas en el

Museo de Zoología de la Universidad de Concep-

ción (MZUC).

Para cada estado de desarrollo de Acarus

farris, se entrega una breve diagnosis de reconoci-

miento apoyada con esquemas originales y fo-

tografías obtenidas al fotomicroscopio y micros-

copio electrónico de barrido (SEM). Se ha mante-

nido el patrón de presentación de las descrip-

ciones de las especies utilizadas por Artigas y Ca-

sanueva (op. cit.) y las abreviaturas usadas por los

especialistas mundiales del suborden Astigmata.

No se entrega esquema de la vista dorsal del

macho, debido a que Griffiths (1964: 424) inclu-

ye uno bastante claro y explícito.

ABREVIATURAS USADAS EN EL TEXTO

AA : Abertura anal

a : Seta anal

aa : Seta de la pata 1

Act : Acetábulo

AG : Abertura genital

Ap : Apodema

ba : Seta del tarso |

BC : Bursa copulatrix

cG : Seta terminal de la gena

Acarus farris, registro nuevo para Chile: ROSAS, M. Y M.E. CASANUEVA

Ch : Quelícero

d : Seta dorsal

E : Espolón

e : Seta del tarso l

f : Seta del tarso 1

g : Seta genital

gT : Seta de la tibia

h : Seta humeral

he : Seta humeral externa

hi : Seta humeral interna

hT : Seta ventral de la tibia 1

hv : Seta humeral ventral

kT : Seta ventral de la tibia

] : Seta lateral

la : Seta lateral anterior

le : Seta lateral externa

lp : Seta lateral posterior

mG : Seta basal de la gena

MZUC : Museo de Zoología de la

Universidad de Concepción

nG : Seta de la gena

Pl-4 : Patas la IV

Pp : Seta del tarso l

pa : Seta postanal

Pdp : Pedipalpo

pR : Seta del trocánter

Ps : Seta supracoxal

psc : Solenidio de la tibia III

q : Seta del tarso 1

ra : Seta del tarso l

S : Seta del tarso I

sae : Seta sacra externa

sai : Seta sacra interna

sce : Seta escapular externa

sci : Seta escapular interna

SCX : Seta coxal

SEM : Microscopio Electrónico de Barrido

sP : Seta del trocánter III

Ssj : Surco sejugal

Stn : Esternón

U : Uña de la pata

v : Seta del tarso l

vA : Ventosa anal

ve : Seta vertical externa

vF : Seta del fémur

vi : Seta vertical interna

vI : Ventosa del tarso 1V

wa : Escama tarsal

wF : Seta pata IV (homóloga a vF)

€ : Solenidio épsilon

w : Solenidio omega

e : Solenidio phi

O : Solenidio sigma

RESULTADOS Y DISCUSION

Casanueva y Artigas (1985) mencionan que la

mayoría de las especies de ácaros que se presen-

tan frecuentemente en el polvo de habitación son

cosmopolitas y, que es poco probable que una es-

pecie de ácaro nativo sea capaz de constituir

poblaciones con niveles significativos para la sa-

lud humana. Se debe destacar la real importancia

que tiene este tipo de estudio, debido a que con el

conocimiento de la fauna acarológica del polvo

de las habitaciones es posible determinar, poste-

riormente, medidas de control de ellas o la utiliza-

ción de técnicas que permitan insensibilizar al ser

humano a estas especies que, potencialmente,

pueden constituir agentes alérgenos, al igual que

las ya reconocidas especies Dermatophagoides

pteronyssinus y Dermatophagoides farinae.

Del total de las muestras obtenidas en la

VIII Región, cuatro recolectadas en dormitorios

en la ciudad de Concepción resultaron positivas

para la presencia de Acarus farris.

A continuación se redescriben todos los es-

tados de desarrollo de esta especie, siguiendo el

mismo criterio utilizado en las publicaciones an-

teriormente citadas.

Acarus farris (Oudemans, 1905)

(Figs. 1-23)

Aleurobius farris (Oudemans, 1905)

Acarus farris (Oudemans, 1905). Griffiths, 1964;

Hughes, 1961; Hughes, 1973.

MACHO

Idiosoma ovalado, poco coloreado; margen pos-

terior uniformemente redondeado. Patas y gna-

tosoma varían en color, de rosado pálido a

marrón-rojizo, según su dieta. Setas del idiosoma

lisas o pectinadas. En la superficie dorsal las setas

vertical interna (vi), escapulares externa e interna

(sce y sci) y sacra interna (sai), gruesas y fácilmen-

te visibles. Las setas vertical externa (ve), hume-

ral externa (he), laterales posteriores (Ip), dorsal 4

(d4) y sacra externa (sae), pectinadas, espaciadas

entre sí y menos distinguibles. Setas dorsal 1 (d]),

dorsal 2 (d)), dorsal 3 (d3) y lateral anterior (la) li-

sas o levemente pectinadas. Seta supracoxal (Fig.

10) ramificada, con prolongaciones aguzadas en

su extremo distal y cuyo origen se ubica en la

parte posterior del esclerito coxal I. Setas ventra-

les lisas, con excepción de la seta humeral ventral

(hv). Seta postanal 2 (pa>) lisa y larga, más larga

que paj.

Gayana Zool. 55(3), 1991

En vista dorsal (ver Griffiths, 1964: 424), es-

cudo propodosomal presente, en forma de “cam-

pana” y con finas granulaciones; vértices poste-

riores aguzados y los anteriores redondeados; se

extiende desde la base de la seta ventral interna

(vi) hasta la región frente a la seta escapular inter-

na (sci). Dos pares de setas escapulares (sce y sci)

dispuestas en una línea transversal en el propodo-

soma, bajo el escudo y a nivel de la coxa II; seta

sce levemente más larga que sci. Dorso del histe-

rosoma con tres pares de poros circulares; un par

ubicado por debajo de la seta lateral externa (le),

el segundo par en el margen lateral del histeroso-

ma, y el tercer par se encuentra en el borde late-

roposterior, a nivel de la base lateral de la seta

sce.

En vista ventral (Figs. 1 y 3), un par de setas

ventro-humeral (hv) situada frente a las coxas II;

una seta coxal (scx) en coxas II y IV. Apodemas

(Ap) de las patas I unidos formando un corto es-

ternón (Stn) en la línea medio-ventral del idioso-

ma; apodemas de las patas II, III y IV libres; apo-

dema de pata Ill estrecho. Setas laterales poste-

riores (Ip) más largas que las setas genitales y ana-

les. Seta humeral ventral (hv) pectinada, con

extremo distal liso y en forma de látigo. Abertura

genital (AG) (Fig. 1) grande, semi-triangular, ubi-

cada entre las coxas IV; con dos pequeños acetá-

bulos (Act) y tres pares de setas genitales lisas (g-

g3): gy ubicada a la altura de la coxa IL g>

desplazada hacia la abertura genital, inserta entre

los acetábulos y g3 levemente en línea recta con

g¡, ubicada a la altura del tercio posterior de la

abertura genital. Elemento basal del pene o tubo

copulador con margen posterior curvado; tubo

copulador corto, truncado y con el ápice curvado

hacia abajo. Abertura anal (AA) (Fig. 1) alarga-

da, estrecha, no alcanza el extremo posterior del

idiosoma; con un par de setas anales (a) lisas, ubi-

cadas a la altura de la distancia media de la aber-

tura, levemente anterior al par de ventosas anales

(vA). Base de los tres pares de setas postanales

(pa¡-pa3) forma un arco que corre paralelamente

al extremo posterior del idiosoma; pa¡ corta, ubi-

cada a cada lado del extremo terminal del arco;

pa) a lo menos dos veces mayor que la longitud

de paz y dispuesta en línea con la ventosa anal.

Un par de poros circulares presentes en la región

lateral y externa a la posición de paz.

Patas (Fig. 1) levemente más cortas que la

longitud del idiosoma; pretarsos desarrollados,

con una uña (U) corta y fuerte; gena y fémur de

la pata I más anchos que largos; fémur l con un

espolón (E) en su superficie ventral, que porta

una seta femoral (vF) en su base; superficie

ventral de la gena | con dos proyecciones en for-

ma de pequeños dientes. Seta del tarso l (s) espi-

niforme, más delgada y larga que en la hembra.

Tarso IV con dos ventosas copulatorias (vT) pe-

queñas, resultantes de una modificación de las se-

tas d y e, separadas entre sí por un espacio menor

a su diámetro. Quetotaxia de las patas similar a la

de la hembra. En general, setas y solenidios de

mayor longitud que en la hembra y tritoninfa.

Longitud del idiosoma: 320-395 um.

HEMBRA

Idiosoma (Fig. 4) más grande que en el macho

(Fig. 3), completamente redondeado y ovalado.

Gnatosoma (Fig. 14), setas dorsales, Órgano de

Grandjean, seta supracoxal (Ps), escudo propodo-

somal y poros circulares como en el macho. Sur-

co sejugal (Ssj) distintivo (Fig. 15). En vista

ventral (Fig. 2) difiere del macho por no presen-

tar ventosas anales, por presentar un número or-

denado de setas anales y sólo dos setas postanales

(pa] y pa>). Abertura genital (AG) (Fig. 6) alarga-

da, semitriangular, ubicada a lo largo de la línea

media del idiosoma; se extiende desde la coxa III

a la coxa IV; con tres pares de setas genitales (g)

(Fig. 12): g¡ y g) levemente en línea recta, g si-

tuada a la altura del margen posterior del segun-

do acetábulo y g3 desplazada lateralmente, si-

tuada más atrás del margen posterior de la aber-

tura genital. Abertura anal (AA) (Fig. 7) alarga-

da y próxima al extremo posterior del idiosoma;

con cinco pares de setas anales (a): a], ay y as si-

milares en longitud, a) dos veces más larga que

las restantes (Fig. 13). Margen posterior del

idiosoma liso o lobulado (Fig. 11), con o sin una

leve hendidura en su línea media. Dos pares de

setas postanales (pa) presentes, pa) aproximada-

mente dos veces más larga que pa¡. Bursa copu-

latrix (BC) ubicada en posición centro-dorsal

(Fig. 7), cerca del margen posterior del idiosoma,

se abre en la base de una estructura en forma de

platillo quitinizado. Hembra normalmente con

un huevo (Fig. 5) en el interior del idiosoma. Lon-

gitud del huevo: 380 a 420 um.

Pata I más ancha que las restantes (Fig. 2);

Acarus farris, registro nuevo para Chile: Rosas, M. Y M.E. CASANUEVA

fémur Í sin espolón y gena Í sin proyecciones

dentiformes (Fig. 16). Tarso IV no presenta ven-

tosa copulatrix (Fig. 17). Región distal del tarso 1

(Fig. 23) con seis setas: d, e y f, delgadas y pilifor-

mes; q, v y s, más cortas que las anteriores y espi-

niformes. Seta f ubicada en posición axial, con

longitud igual a la mitad de la seta dorsal d; seta e

en posición preaxial, corta, con longitud igual a

la mitad de la seta f. Ventralmente, seta v ubica-

da en posición láterointerna a seta q. Región me-

dia del tarso 1 (Fig. 23) presenta cuatro setas: ba,

la, ra y wa; región basal presenta dos solenidios:

solenidio w) en posición anterior a la línea media

postaxial “d”, situado en la cara postaxial y con

longitud igual a la mitad de «x; solenidio épsilon

(€) diminuto, sagitado, emerge anteriormente a

w] y, con una seta aa lisa, levemente más larga

que el solenidio «; el cual tiene márgenes que di-

fieren escasamente en la forma terminal de la ca-

beza. Solenidio phi (p) largo, ubicado dorsal:

mente y sobrepasa la longitud total del tarso (Fig.

17). Setas de la tibia 1 (gT y hT) fuertemente pec-

tinadas. Setas de la gena 1 (cG y mG) fuertemente

pectinadas; solenidios 0] y 07 ubicados en una

depresión del margen dorsal del segmento; 9]

aproximadamente tres veces más largo que 9)

(Fig. 23). Fémur y trocánter 1 presentan una sola

seta: vF y Pr respectivamente. Pata II semejante

a la pata l, excepto en que la seta aa, solenidios

w), 03 Y 9) ausentes. Pata III no presenta las se-

tas ba, aa, l, gT, CG y wF; setas kT, nG y sP pre-

sentes y homólogas a las setas hT, mG y pR res-

pectivamente. Pata IV con solenidio e y un sole-

nidio a; setas nG y sR ausentes; seta wF (homó-

loga a vF) presentes. Longitud del idiosoma: 348-

465 um.

LARVA

Setas dorsales (Fig. 18) lisas y cortas, con longl-

tud proporcional al idiosoma, más cortas que en

los estados adultos; seta sce más corta que vi; seta

pa con una longitud igual al 20% de la longitud

del idiosoma. Seta supracoxal gruesa, con ramifi-

caciones elongadas, cilíndricas y terminadas en

una proyección transparente. Setas dq, £, a, pa]

y pa) ausentes. Carece de abertura genital. Pre-

senta tres pares de patas cortas. Quetotaxia de las

patas con una simplificación progresiva en los

segmentos; solenidio w] de los tarsos 1 y 11 con re-

217

gión distal más definida que en los estados adul-

tos (Fig. 18).

PROTONINFA

Setas dorsales más cortas y en menor número

que en los adultos. Extremo posterior del idioso-

ma no lobulado (Fig. 19). Abertura genital (AG)

(Figs. 8 y 20) elongada y rudimentaria, con un

par de setas genitales. Abertura anal (AA) alarga-

da. no alcanza el extremo posterior del idiosoma

y con tres pares de setas anales (a¡-a3) (Fig. 19):

setas a] y a) dispuestas en línea, lateralmente a

lo largo de la abertura (Fig. 21) y, az desplazada

lateralmente a la seta a). Presenta cuatro pares

de patas similares en longitud (Fig. 8).

TRITONINFA

Similar a la hembra, excepto que las setas dorsa-

les y ventrales son más cortas. Abertura genital

(AG) rudimentaria, con un arco formado por las

setas genitales y acetábulos evidentes (Fig. 9).

Abertura anal similar a la hembra (Fig. 13). La

quetotaxia de las patas similar a la de los adultos.

HIPOPUS:

Superficie dorsal convexa con finas irregularida-

des espaciadas; está dividido, evidenciando pro-

podosoma e histerosoma. Seta vi fuertemente

pectinada y proyectada hacia la propodosoma,

con longitud aproximadamente igual al 10% de

la longitud del idiosoma; seta ve con longitud

igual a un 5% de la longitud del idiosoma. Dos

pares de setas escapulares atraviesan el propodo-

soma a nivel de la coxa Il; setas sci y sce largas,

aproximadamente iguales a un 25% de la longi-

tud del idiosoma, sci levemente más larga que

sce. Setas del histerosoma apreciablemente más

cortas que sci y sce. Cuatro pares de setas dorsa-

les emergen en una línea transversal, inmediata-

mente por debajo de la separación entre propodo-

soma e histerosoma. Setas he y hi ubicadas cerca

del margen lateroanterior del histerosoma; d1 y

d) se originan a la altura de la base de las escápu-

las; d) se extiende un poco más lejos en compara-

ción con los adultos. Setas d y dy similares a d);

seta d, más larga que d4; d) y d3 aproximada-

Gayana Zool. 55(3), 1991

mente 1.5 veces más larga que dj. Tres pares de

setas laterales cortas presentes, 1; es lateral a d3 y

similar en longitud a d¡, más corta que dy. Dos

pares de setas, posiblemente homólogas a las

sacras, se proyectan desde el margen posterior del

cuerpo a nivel de la coxa IV.

Superficie ventral del gnatosoma reducida,

termina en un par de lóbulos y carece de boca. El

esternón no es bífido y es libre, al igual que los

apodemas I. Epimeritos bien marcados, se extien-

den hacia abajo alcanzando los apodemas Ill y

hacia la proximidad de la línea media del idioso-

ma. Apodema IV curvo, no se junta con el apo-

dema III. Con un par de setas coxales ubicadas a

la altura del término de los apodemas de las patas

IV. Borde de los apodemas II, III y IV distintiva-

mente grueso. Margen interno de coxa IV en for-

ma de “L”, con brazos horizontales y paralelos al

margen anterior que se extienden hacia cada lado

de la abertura genital, se fusionan anteriormente

con la abertura genital y hacia la línea media del

idiosoma. Un par de setas genitales presente a ca-

da lado de la abertura genital, dispuestas en un

ángulo de 45” de inclinación. Quetotaxia del hi-

popus es diferente a la de los otros estados, pero

es difícil homologar las setas con aquéllas pre-

sentes en los estados adultos. La principal dife-

rencia es un cambio de forma, la expresión u

supresión de ciertas setas y solenidios. Abertura

anal rodeada por ventosas, ubicadas posterior y

lateralmente a la seta anal; estas ventosas le per-

miten presentar una forma especial de vida, la

cual es activa y móvil. Longitud promedio del

cuerpo (propodosoma e histerosoma): 240 um.

(Griffiths, 1964).

Acarus farris se ha encontrado en quesos,

colecciones de insectos, bulbos de jacintos, hu-

mus, heno de establos, capa profunda de tierra de

gallineros, depósitos de granos almacenados y

asociado a nidos de ratas y aves.

Distribución: Inglaterra, Escocia, Gales, Holanda,

Alemania, Kenia, U.S.A. Se registra por primera

vez para Chile, en Concepción.

RELACIONES MORFOLOGICAS ENTRE ACARUS SIRO LINNE 1758 Y

ACARUS FARRIS (OUDEMANS, 1905)

En un análisis preliminar se puede observar que

Acarus farris es morfológicamente similar y pró-

xima a Acarus siro. Griffiths (1964) realizó expe-

rimentos de hibridación y determinó que estas es-

pecies están aisladas reproductivamente. Las

principales diferencias observadas entre ambas

especies se detallan a continuación:

Idiosoma de Acarus siro incoloro, ovalado,

más largo que ancho; margen posterior del idioso-

ma en ambos sexos redondeados. Acarus farris

posee un idiosoma incoloro, ovalado o redonde-

ado más largo que ancho, el extremo posterior

del idiosoma uniformemente redondeado en el

macho y levemente lobulado o no en la hembra.

Placa propodosomal tan ancha como larga, con

márgenes laterales irregulares y margen posterior

casi recto en A. siro; más larga que ancha, con

márgenes laterales rectos y margen posterior re-

dondeado en A. farris. Setas dorsales de A. siro

delgadas y lisas; con excepción de setas vi, sci y

sce, levemente pectinadas en toda o parte de su

longitud. A. farris con setas dorsales fuerte (vi,

sci, sai) o levemente pectinadas (ve, he, lp, da,

sae) en toda su longitud. Setas d¡-d3, hi y la, del-

gadas y lisas. Seta d¡ más corta que d) y d3, simi-

lares en longitud en A. siro; setas d] y d) iguales

en longitud, más largas que d3, en 4. farris. Seta

sce levemente más corta que sci en A. siro y leve-

mente más larga que sci en 4. farris. A. siro con

dos setas laterales (la y 1p) de igual longitud; 1p

más larga que seta la en A. farris. Seta sacra inter-

na (sai) larga, 10% más larga en A. farris.

MACHOS

Extremo posterior del idiosoma en 4. siro con

tres pares de setas cortas y dos pares de setas lar-

gas, paz levemente más larga que setas sae y pa];

pa) más corta que sai. Extremo posterior del

idiosoma en 4. farris con dos pares de setas cor-

tas y dos pares de setas largas; pa) y sai largas, a

lo menos 2 veces más largas que pa] y paz, sub-

iguales en longitud. Lado ventral del fémur I en

A. siro con un espolón pequeño, en 4. farris con

espolón bien desarrollado. Gena l con dos proce-

sos dentiformes en A. farris, los cuales están

ausentes en 4. siro. Solenidio w] corto, compac-

to, con base más ancha y angostándose gradual-

mente hacia la región distal en 4. farris; con un

ensanchamiento en su región distal en A. siro.

Tarso IV con un par de ventosas separadas entre

sí por una distancia igual a su diámetro en A. siro

y. por una distancia levemente menor a su

Acarus farris, registro nuevo para Chile: Rosas, M. Y M.E. CASANUEVA

diámetro en 4. farris. Abertura genital pequeña,

alargada y con seta g) ubicada lateralmente a los

acetábulos, en línea recta a g¡ en 4. siro; en A.

farris abertura genital grande, semitriangular con

seta g) desplazada hacia la abertura genital: setas

g] y £3 levemente en línea recta. Abertura anal

alargada, con un par de ventosas anales ubicadas

en los lados del extremo posterior de la abertura

anal y con un par de setas preanales cortas, ubi-

cadas en posición anterior a las ventosas anales, a

la altura del extremo anterior de la abertura anal

en A. siro; en A. farris la abertura anal es alarga-

da y estrecha, con un par de ventosas anales ubi-

cadas a la altura de la distancia media de la aber-

tura y con un par de setas anales situadas lateral-

mente a las ventosas anales. Longitud del idioso-

ma en 4. siro 320-460 ¡ym y de 320-397 um en 4.

farris.

HEMBRAS

En vista ventral, extremo posterior del idiosoma

de A. siro con seta pa] levemente más larga que

paz, la cual es subigual en longitud con sai. En

A. farris seta pa¡ dos veces más larga que pa); se-

ta sae una y media vez más larga que pa). Aber-

tura genital en A. siro triangular; setas g] y g2

dispuestas en línea recta, g) ubicada a la altura

de los acetábulos y g3 en el extremo posterior de

la abertura, desplazada lateralmente. Abertura

genital en A. farris semitriangular, más grande

que en A. siro; seta g) situada a la altura del mar-

gen posterior del segundo acetábulo y g3 despla-

zada lateralmente, situada más atrás del margen

posterior de la abertura genital. Abertura anal de

A. siro alargada, no alcanza al extremo posterior

del idiosoma; setas a) y az de igual longitud, tres

a cuatro veces más largas que setas aj, ay y as.

En A. farris la abertura genital es alargada, si-

tuada próxima al extremo posterior del idiosoma;

seta a) dos veces más larga que az y setas aj, ay

y as cortas, subiguales en longitud. Longitud del

idiosoma en A. siro es de 350-480 um y de 380 a

420 um en 4. farris.

PATAS (FIGS. 22 y 23)

Ambas especies presentan similar quetotaxia de

las patas en todos los estados, con las siguientes

excepciones: patas I y II con seta ba situada a ma-

219

yor distancia —a lo menos una y media vez— del

solenidic «wj en 4. siro que en A. farris. Solenidio

w] recumbente, ancho en su base, con una

estrangulación en su tercio distal y luego con un

ensanchamiento apical en 4. siro; en A. farris so-

lenidio w con márgenes similares a lo largo de to-

da su longitud. Seta tarsal s, más ancha, larga y

gruesa en A. siro que en A. farris, en el cual la se-

ta s es aproximadamente igual a la mitad de la

longitud de la uña tarsal. Setas tarsales q y v espi-

niformes, más gruesas y notorias en Á. siro que

en A. farris. Gena 1 del solenidio a] tres veces

más largo que 0) en A. siro y sólo dos veces más

largo que 9) en A. farris.

LARVAS-NINFAS:

No se encontraron características diagnósticas re-

levantes para diferenciar los estados de larva,

protoninfa y tritoninfa de ambas especies.

Sin embargo, el estado de deutoninfa o hipo-

pus de A. farris se diferencia del hipopus de A. si-

ro, por presentar setas propodosomales sce y sci y

setas dorsales d1, d) y d3 más cortas e impercep-

tiblemente expandidas, setas dj, d4 y 1; subi-

guales en longitud. En A. siro las setas sce, sci,

d,d>, d3 y 1] son largas, aplastadas y levemente

expandidas en su región media; setas d) y d3 tan

largas como sci, levemente más largas que l¡ y

d¡; setas d] y l¡ tres veces más largas que dg.

Ventralmente en 4. siro las setas genitales están

dispuestas casi en línea recta; base de las setas y

ventosas, a cada lado de la abertura genital, sepa-

radas por una longitud menor al ancho de la base

de las setas; apodemas IV raramente curvos y no

forman un ángulo a lo largo de la linea media del

histerosoma. En 4. farris las setas genitales no es-

tán dispuestas en línea recta, forman un ángulo

de 45” con respecto a la abertura genital; apode-

mas IV curvos, formando un ángulo respecto a la

línea media del histerosoma (Griffiths, 1964: 426-

436).

CONCLUSION

El análisis de las muestras de polvo de habitación

provenientes de la VIII Región, Chile, permitió

establecer la presencia de la especie Acarus farris

(Oudemans, 1905) (Acari: Acaridae) y se señala

como primer registro válido para el país. Esta es-

Gayana Zool. 55(3). 1991

pecie presenta una morfología similar a Acarus

siro L., pero al detectar diferencias relevantes en.

los adultos y leves diferencias en los estados in-

maduros, se ratifica su posición como una especie

“válida en el “Complejo Acarus”.

Para Chile se encontró en Concepción; pro-

bablemente se puede presentar en otras localida-

des del país, debido a que en las condiciones de

temperatura y humedad en el laboratorio en las

cuales fue criada. permitieron una alta prolifera-

ción de esta especie. Estas condiciones abióticas

se encuentran en diversas regiones de nuestro

país, por lo cual se deben realizar prospecciones

periódicas en otras zonas del país para determi-

nar la real distribución de esta especie en el país.

Los análisis realizados y la bibliografía con-

sultada nos permiten concluir que en este tipo de

estudio es aún necesario recorrer un arduo cami-

no, hasta llegar a tener una visión más completa

y apropiada de la fauna acarológica del polvo de

habitación en nuestro país.

AGRADECIMIENTOS

El presente trabajo se desarrolló con la colabora-

ción del Proyecto N* 20.38.21 de la Dirección de

Investigación de la Universidad de Concepción.

Los autores agradecen a los alumnos del Li-

ceo B-36 Lorenzo Arenas Olivo, de Concepción,

y a los colaboradores voluntarios que facilitaron

parte de las muestras estudiadas. A la Srta. Euge-

nia Spano, del Departamento de Biología Mole-

cular, por facilitar el uso del Fotomicroscopio, y

a los señores Raúl Alarcón, Hugo Pacheco y Ju-

lio Pugin, del Laboratorio de Microscopía

Electrónica, por su desinteresada ayuda en la ob-

tención de las fotografías al Microscopio Electró-

nico de Barrido.

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Manuscrito aceptado en junio de 1991

220

Acarus farris, registro nuevo para Chile: Rosas, M. Y M.E. CASANUEVA

paz 100 jm

FIGURA 1. Vista ventral del macho de Acarus farris (Oudemans, 1905).

153)

Gayana Zool. 553). 1991

FIGURA 2. Vista ventral de la hembra de Acarus farris (Oudemans, 1905)

Acarus farris, registro nuevo para Chile: Rosas, M. Y M.E. CASANUEVA

FIGURAS 3-9. Acarus farris (Oudemans, 1905). Fig. 3. Vista ventral del macho X 6,3; Fig. 4. Vista ventral de la hembra X

6,3; Fig. 5. Vista ventral de una hembra con huevos en su interior X 6,3; Fig. 6. Abertura genital de la hembra X 40; Fig. 7.

Abertura anal de la hembra X 40; Fig. 8. Vista ventral de la protoninfa X 10; Fig. 9. Vista ventral de la tritoninfa X 10.

223

Gayana Zool. 55(3), 1991

FIGURAS 10-15. Acarus farris (Oudemans, 1905). Fig. 10. Seta supracoxal de un macho X 1800: Fig. 11. Vista ventral de la

nembra X 1800; Fig. 12. Abertura genital de la hembra X 1800; Fig. 13. Abertura anal de la hembra X 1800: Fig. 14. Vista

del gnatosoma de la hembra X 390; Fig. 15. Vista lateral de una hembra X 195;

Acarus farris, registro nuevo para Chile: Rosas, M. Y M.E. CASANUEVA

FIGURAS 16-21. Acarus farris (Oudemans, 1905). Fig. 16. Pata 1 de la hembra X 1800; Fig. 17. Vista lateral de las patas

(EIV) de la hembra X 390: Fig. 18. Vista lateral de la larva X 360; Fig. 19. Vista ventral de la protoninfa X 225; Fig. 20.

Abertura genital de la protoninfa X 1800; Fig. 21. Abertura anal de la protoninfa X 1800.

225

Gayana Zool. 55(3), 1991

Clara ma

FIGURA 22. Acarus farris (Oudemans, 1905). Vista lateral de pata 1 de la hembra.

FIGURA 23. Acarus siro Linné, 1758. Vista lateral de pata I de la hembra.

(557

159)

Gayana Zool. 55(3): 227-246, 1991

ISSN 00 16-531X

CONTRIBUCION AL CONOCIMIENTO DEL GENERO COPITARSIA

HAMPSON, 1906 (LEPIDOPTERA: GLOSSATA: CUCULLINAE)

CONTRIBUTION TO THE KNOWLEDGMENT OF THE GENUS

COPITARSIA HAMPSON, 1906 (LEPIDOPTERA: GLOSSATA:

CUCULLINAE)

Erika E. Castillo? y Andrés O. Angulo*

RESUMEN

Se realiza una revisión del género Copitarsia Hampson, 1906

(Lepidoptera: Noctuidae) en Chile, encontrándose un total de

8 especies. De éstas se describen dos nuevas especies: Copitar-

sia anguloi Castillo n. sp. y Copitarsia paraturbata n. sp., una

nueva combinación: Copitarsia clavata (Kóhler) n. comb.,

además de Copitarsia naenoides (Butler), Copitarsia basilinea

Kóhler, Copitarsia humilis (Blanchard), Copitarsia patagoni-

ca Hampson.

Para cada una de las especies, se indican las característi-

cas morfológicas externas, la estructura de genitalia, se inclu-

yen las sinonimias, distribución geográfica y plantas hospeda-

doras.

Se entregan dos claves para el reconocimiento de las es-

pecies del género Copitarsia Hampson, una basada en la ma-

culación alar y otra en la genitalia de los machos.

PALABRAS CLAVES: Lepidoptera. Noctuidae. Sistemática. Co-

pitarsia Hampson, 1906.

* Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción. Casilla 2407, Concepción, Chile, S.A.

227

ABSTRACT

The genus Copitarsia Hampson, 1906 (Lepidoptera:

Noctuidae) in Chile is studied. A total of eight species are

described: Copitarsia anguloi Castillo mn. sp., Copitarsia

paraturbata mn. sp., Copitarsia clavata n. comb., and C.

naenoides (Butler), C. basilinea Kóhler, C. humilis

(Blanchard), €. patagonica Hampson.

The external morphology, the genitalia, synonymy,

geographical distribution and plant-hosts are included for

each species.

Key based on the wing spots and male genitalia for all

species of the genus are given.

KEYWORDS: Lepidoptera. Noctuidae. Systematics. Copitarsia

Hampson, 1906.

INTRODUCCION

El género Copitarsia Hampson, 1906, fue descri-

to sobre la base de 6 especies, siendo Copitarsia

turbata (Herrich-Scháffer) la especie tipo del gé-

nero. Ha existido la tendencia a considerarlo co-

mo un género prácticamente monotípico, debido

a que sólo se conocía claramente la especie Copi-

tarsia consueta (Walker).

Gayana Zool. 55(3), 1991

En 1951 Kóhler hace una revisión del géne-

ro en Argentina, habiendo encontrado 5 de las 6

especies originales mencionadas por Hampson;

posteriormente en 1958 Kóhler describe a Copi-

tarsia basilinea.

Por lo antes señalado, es necesario realizar

un estudio más acabado sobre este género, ya que

existe muy poca información al respecto.

De tal manera que los objetivos del presente

trabajo son: establecer el status sistemático de

Copitarsia Hampson, 1906, y el número de espe-

cies componentes del género, como asimismo su

real distribución geográfica.

MATERIALES Y METODOS

Los ejemplares utilizados para el presente trabajo

se obtuvieron del Museo de Zoología de la Un:

versidad de Concepción, Chile (MZUC).

La descripción de machos y hembras de las

especies del género fueron hechas sobre la base

de la maculación alar; coloración de la tégulas y

patagias; estructuras presentes en las patas proto-

rácicas y en las genitalias de los machos y

hembras.

Las genitalias fueron preparadas según el

método descrito por Angulo y Weigert (1977).

Las escalas de los esquemas corresponden a 1

mm., a no ser que se indique de otra manera.

ABREVIATURAS USADAS

aan apófisis anterior.

ae aedeagus.

apo apófisis posterior.

cebu cervix bursae.

(00) cornuti.

cobu corpus bursae.

cu cucullus.

cv costa valvar.

dey ductus eyaculador.

di digitus.

dubu ductus bursae.

dus ductus seminalis.

fae funda del aedeagus.

ha harpe.

lov lóbulos del ovopositor.

osbu ostium bursae.

sac Ssaccus.

sacl sacculus.

un uncus.

ve vesica.

yu yuxta.

(59)

RESULTADOS

A continuación se describen las 8 especies en-

contradas que conforman el género Copitarsia

Hampson, 1906.

Copitarsia Hampson, 1906

Copitarsia Hampson, 1906, p. 184.

Cotarsina Kóhler, 1951, p. 166.

Especie tipo del género Copitarsia Hampson: Po-

lia turbata (Herrich-Scháffer).

Especie tipo del género Cotarsina Kóhler: Cotar-

sina clavata Kóhler.

DIAGNOSIS

“Probóscide completamente desarrollada; palpos

recurvados, el 2” segmento cubierto con pelos en

el frente, el 3% porrecto; frente liso; ojos grandes,

redondeados, antenas del macho ciliadas; cabeza

y tórax cubierta con pelos y escamas como pelos

mezclados con algunas escamas, el pro y metató-

rax con crestas esparcidas; tarsos anteriores con

las espinas curvadas como uñas en el lado exter-

no del primer segmento; abdomen con la cresta

dorsal sobre el segmento basal. Alas anteriores

con el ápice rectangular, el termen redondeado;

las venas 3 y 5 están cerca del ángulo de la celda;

6 desde el ángulo superior; 9 desde la 10 anasto-

mosándose para formar la 11 desde la celda; alas

posteriores con venas 3, 4 desde el ángulo de la

celda; 5 obsolescente desde la mitad de la disco

celularis; 6, 7 desde el ángulo superior; 8 anasto-

mosándose con la celda cerca de la base solamen-

te.” (Hampson, 1906).

Terminalia: “uncus dilatado debajo de la

curvatura final, ampliado antes de la extremidad,

que es redondeada; las dos depresiones laterales,

pilosas en su margen inferior; se hallan separadas

por una arista sobre el vértice del uncus, aplana-

da y pilífera, que se bifurca hacia los dos márge-

nes, dejando la punta lisa; la yuxta está caracteri-

zada por un hueco redondeado, limitado en am-

bos lados por un proceso obtuso, alargado, que se

eleva desde una base cónica y ancha; valva con la

punta escotada y una pequeña y corta corona;

sacculus alargado; debajo de su extremo se halla

el borde reforzado que forma la base del harpe;

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO

digitus largo, con el extremo engrosado; saccus

amplio, con punta; aedeagus con refuerzo quiti-

noso en forma de una cinta levemente dentada;

vesica con una serie larga de espinas cortas y dos

paquetes menores de espinas algo más largas.

(Preparados N* 926 y 922, de la col del autor).

(Kohler, 1958).

Copitarsia turbata (Herrich-Scháffer)

(Figs. 1, 2, 12, 13 y 14)

Polia turbata Herrich-Scháffer, 1855, figs. 639-

640.

Copitarsia turbata (Herrich-Scháffer). Hampson,

1906, p. 184.

Copitarsia consueta (Walker). Hampson, 1906, p.

183. (mala identificación)

Mamestra inducta Walker, 1856, p. 236 (nec

Druce).

Spaelotis subsignata Walker, 1856, p. 371.

Agrotis hostilis Walker, 1857, p. 737.

Graphiphora sobria Walker, 1857, p. 744.

Agrotis incommoda Walker, 1865, p. 692.

Agrotis peruviana Walker, 1865, p. 693.

HoLortiro: Perdido.

Macho: (morfo: oscuro) (Fig. 1). Cabeza castaño

oscura, algo grisácea, frente con una línea

negruzca transversal, palpos castaños oscuros

con escamas y pelos grisáceos concentrados en el

segundo y tercer segmentos, antenas débilmente

plumosas, los pelos son tan largos como el ancho

de los segmentos antenales, ubicados en la región

ventral de la antena, en el dorso presenta esca-

mas con dos corridas de pelos en la parte ventral

más largos. Tórax castaño oscuro a grisáceo; té-

gula con una línea negra transversa que forma un

arco sobre la cabeza; patas con los fémures en su

parte dorsal con escamas blanquizcas y oscuras,

ventralmente con escamas piliformes largas, ti-

bias lateralmente con escamas blanquizcas y os-

curas, dorsal y ventralmente con escamas pilifor-

mes largas, la mediana presenta 2 espolones en el

ápice ventral, la posterior con 2 pares de espolo-

nes: 1 par en la mitad y otro en el ápice, el inter-

no es más largo; dorso de los tarsos con escamas

blanquizcas en el borde posterior de cada seg-

229

mento tarsal, el resto con escamas oscuras, en la

parte ventral de los tarsos hay abundantes espi-

nas cortas castaño rojizas, espinas del primer seg-

mento tarsal en las patas anteriores son curvadas.

Alas anteriores castaño oscuras, banda subbasal

castaño clara limitada de castaño negruzco en

ambos lados, desde la costa, algo oblicua hacia el

ápice alar, hasta el tronco radial donde se curva

hacia la base alar hasta el tronco medial donde

un corto trecho se curva hacia el ápice alar para

volver hacia la base alar hasta el tronco cubital

donde desaparece sin llegar al tronco anal; banda

anterior transversa castaño clara limitada de cas-

taño negruzco en ambos lados, desde la costa

hasta el tronco radial en donde se curva hacia la

base hasta el tronco medial volviendo obli-

cuamente hacia el ápice alar hasta la cubital con-

tinuando hasta la anal en donde se curva notable-

mente hacia el ápice alar volviendo antes de al.

canzar el margen interno; mancha claviforme po-

co notable castaño clara bordeada de castaño os-

curo; mancha orbicular subcircular castaño clara

(de mayor o menor tamaño), con un punto casta-

ño oscuro en el centro y bordeada de una línea

castaño oscura; banda mediana reducida a una lí-

nea oscura dentada (6-7 dientes) hacia el ápice

alar; mancha reniforme negruzca bordeada de

castaño claro y luego de castaño oscurq, en el

centro una línea clara; banda posterior transversa

castaño clara limitada de castaño oscuro en el

costado basal; dentada hacia el ápice alar (9-10

dientes); banda subterminal castaño clara limitada

con castaño oscuro en ambos lados, levemente

dentada hacia el ápice alar; banda terminal

estrecha castaño clara, con 7-8 dientes castaño

oscuros dirigidos hacia la base; por el costado api-

cal limitada con una línea blanca continua, la que

a su vez limita con una línea castaño clara;

mancha apical ausente. Ala posterior clara en la

base y en el centro, que se oscurece gradualmente

hacia los bordes, termen limitado por una línea

castaño clara que a su vez limita por la parte ex-

terior con una banda castaño oscura como la zo-

na más oscura del termen, fringe albo. Abdomen

castaño grisáceo, segmento terminal algo más os-

curo, vientre de color gris, con visos plateados y

abundante puntuación negra, borde lateral de los

esternites castaño negruzcos.

GenITaLia: (figs. 12 y 13). Valvas alargadas, 5-6 ve-

ces más largas que su ancho medial, presentando

un abultamiento en su parte media, atenuadas

Gayana Zool. 55(3), 1991

hacia el ápice, con corona; harpes delgados 12-13

veces más largos que anchos, suavemente curva-

do hacia el borde dorsal de la valva, ápice romo;

yuxta continua en forma de U; saccus de borde

posterior aguzado; digitus grueso, de ápice trun-

cado subcuadrangular, que apenas sobresale del

borde ventral de la valva; uncus en vista lateral

curvado en ángulo recto desde su origen, el borde

dorsal se levanta en una prominencia entre el se-

gundo y tercer tercio, que se aguza hacia el ápice;

uncus en vista dorsal hacia el ápice presenta una

suave escotadura en ambos lados. Aedeagus for-

mado en el ápice por una pequeña placa dentada.

Macho: (morfo: claro) (Fig. 2). Similar al morfo os-

curo, se diferencia del morfo anterior en presen-

tar las alas anteriores y posteriores castaño claras

y la línea subterminal moderadamente dentada.

GENITALIA: (Figs. 12 y 13).

Hembra: Similar al macho. Antenas débilmente

plumosas en la parte ventral, los pelos más cortos

que el ancho de los segmentos antenales, simila-

res a los pelos de la línea ventral de los segmentos

de la antena del macho.

GenITaALta: (Fig. 14). Bursa copulatrix bilobulada;

el signum del corpus bursae compuesto en un

costado por una línea continua de dientes parale-

los, al borde, en el lado opuesto una fila de dien-

tes que recorre la bursa desde la mitad de su base

hacia el ápice interrumpiéndose a los tres cuartos

de la distancia, por el costado se continúa con el

cervix bursae; de mayor tamaño atenuada en su

parte distal, de la cual se continúa el ductus semi-

nalis, tanto la bursa copulatrix como la bolsa ac-

cesoria presentan carenas paralelas que la ador-

nan; ductus bursae ancho y corto, su ancho es

igual a tres cuartos del largo, comunicándose al

exterior por el ostium de forma lineal; las apófisis

posteriores 3.5 veces más largas que las apófisis

anteriores.

EXPANSIÓN ALAR: X= 35.3 mm. (n= 15)

Pura: (Figs. 29, 30 y 31) (Tomadas de Artigas y

Angulo, 1973).

Larva: (Figs. 32 - 37) (Tomadas de Artigas y An-

gulo, 1973; Angulo ef. al., 1985).

Huevos. (Figs. 38 - 40) (Tomadas de Angulo y

Weigert, 1975).

NOMBRES VERNACULARES: “Polilla de la vid”; “Cuncu-

”: “Polilla grande de la vid”; “Cun-

nilla de la vid”;

cunilla de las chacras”; “Cuncunilla copitarsia”;

”: “Copitarsia”.

“Cuncunilla de las hortalizas”;

PLANTAS HOSPEDADORas: Cynara scolymus (alcacho-

fa), Medicago sativa (alfalfa), Lolium multiflo-

rium (ballica), Beta vulgaris var hortensis (be-

tarraga), Dianthus cariophilus (clavel), Asparagus

officinalis (espárrago), Spinacia oleracea (espina-

ca), Rubus idaeus (frambuesa), Fragaria chiloen-

sis (frutilla), Simmondsia californica (jojoba), Zea

mays (maiz), Solanum tuberosum (papa), Brassica

napus (raps), Nicotiana tabacum (tabaco), Trifo-

lium pratense (trébol), Vitis vinifera (vid) y male-

zas.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: México: Jalapa, México ciudad,

Durango, Patzcuaro. Guatemala: Totonicapam. Costa Rica:

Irazu. Colombia: Bogotá. Perú. Argentina: Mendoza, Tunu-

yan, Neuquén, Santiago del Estero, Buenos Aires, Comodoro

Rivadavia, Chubut. Venezuela. (Hampson, 1906). Chile: Ta-

rapacá (1 Región); Santiago (Región Metropolitana); Talca

(San Clemente), Linares (VII Región); Concepción, Chillán,

Ñuble (VIH Región); Malleco, Cautín (IX Región). (Artigas y

Angulo, 1973). Azapa cerro Moreno (1 Región); Valle Huas-

co (111 Región); Coquimbo (IV Región); Pichidegua (VI Re

gión); Mulchén (VIII Región); Termas de Río Blanco (IX Re-

gión); Valdivia, Los Lagos (X Región).

MATERIAL EXAMINADO

ADULTOS

148 ejemplares (79 machos, 69 hembras): 1 macho, Antuma-

pu Santiago X-1974. P. Arretz Ex-alfalfa. Criado en Lab. G.

Barría. Nac. 20/22/X1-74 Peña; 1 macho, Antumapu San-

tiago. Oct. 1974. P. Arretz. Ex: alfalfa. Criado en Lab. G.

Barría. Nac. 22/24-1X-74 Peña; 2 hembras, Antumapu San-

tiago. Oct. 1974. P. Arretz. Ex-alfalfa. Peña; 3 machos, 2

hembras, Antumapu Santiago. Oct. 1974 P. Arretz. Ex-

alfalfa. Criado en Lab. G. Barría, nac. 17/18-X-74 Peña; 1

macho, Antumapu Santiago oct. 1974. P. Arretz Ex-alfalfa.

Criado en Lab. G. Barría. Nac. 20/22/X-74 Peña; 1 macho,

Antumapu Santiago nac. 15-XI1-80 P. Arretz. En alfalfa; 1

macho, 1 hembra, Antumapu Santiago nov. 1974. P. Arretz.

Ex-maiz. Peña; 1 hembra, Antumapu Santiago 23-X11-1980

P. Arretz. En alfalfa; 1 hembra, Antumapu Santiago nac. 15-

XIESO P. Arretz. En alfalfa; 3 hembras, La Obra Santiago

XI-51 n.n. col; 1 hembra Santiago (Macul) Prov. Stgo (Chile)

Col. J. Herrera F. Pedagógico (U. de Chile); 1 hembra, Cura-

cavi Santiago XI-1974 Peña P. Arretz Ex: Alfalfa; 1 hembra,

Guayacan [sic] Stgo. 3.51 Colección L.E. Peña 1962; 1

macho, 1 hembra, Guayacan [sic] Santiago 24-X-51 T. Ra-

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO

mir; 1 hembra, Chile Santiago Prov. Maipú, Obrda [sic], La

Platina 510 m malaise [sic] 33% 315 70% 47 W 15-X-1967 N.

Hichins O. Peña; 1 hembra, R. Metrop. Chile 37 K.O San-

tiago. Espinaca Laboratorio. Larva: 24-9-1985. Pupa: 18-10-

1985. Adulto: 14-11-1985. 850924-2 J.A; 1 hembra, Santiago

20.X.49; 1 hembra, R.H. Gonzalez [sic]. Colector, Esc. de

Agronomía, Rinconada Maipú 1960, Peña; 1 macho, Esc. de

agronomía. Luz. 16 nov. 1960. R.H. González. Collector Pe-

ña; 1 hembra, 03/12/86 La Platina Stgo Alcachofa J. Machu-

ca 125 Alcachofa jojoa [sic]; 1 hembra, La Platina Stgo.

11/11/86. Alcachofa J. Machuca 048; 1 macho, La Platina St-

go. 06/11/86. Alcachofa, J. Machuca; 1 hembra, Pichidegua,

4-X-1964 Trébol rosado Pupa: 27.X.64-13,X1,64 nacido en

laboratorio P. Arretz colector. Peña; 1 hembra, Pichidegua

4-X-1964. En trébol rosado. Pupa 14,X,64-11,X1-64 nacida

en laboratorio P. Arretz colector. Peña; 1 macho, 1 hembra,

Azapa cerro Moreno 13-X1-68. En malezas. OB. Lab. R.

Mendoza. Col; 1 hembra, Azapa. Tarapacá 21.X1.56; 1

hembra, Valle Huasco 3-X11-1971 col: R. Bobadilla. Ex: Pa-

pas, maíz, etc; 1 hembra, Valle Huasco 3-X11-1978 col: R.

Bobudilla [sic] Ex: papas, maiz, etc. Peña; 1 hembra, Valle

Huasco 3-XII-1971 Col: R. Bobadilla Ex: papas, maíz, etc.

Peña; 2 machos, 1 hembra, Talca San Clemente dic, 9,71

J.N. Artigas coll nacidas en laboratorio. Pupa: 21-X11-71.

Adulto: 9-1-72; 1 hembra, Valdivia 7-feb-1974 Carrillo: coll

INCO; 2 hembras, Valdivia 25-8-85 Trampas: Coll; 1 macho,

J.A. 850805C [sic]; 1 hembra, Coquimbo XP8S [sic] 09 20-12;

1 hembra, Prov. Coquimbo El Naranjo Tijama agosto,

sep.1967 coll. J. Molina Peña; 1 hembra, Dichato I. 1951; 1

hembra, 14-1-60 Krahmer; 1 macho, 24/12/89 Chillán. Col:

E. Castillo; 1 macho, 1 hembra, Cojhueco 20-Enero-1973

Moreno: Coll; 1 macho, Coihueco. 28-Enero-1973 Moreno:

Coll; 1 macho, 29-I11-60 Krahmer; 1 macho, Los Lagos 14-

Feb-1973 Moreno: coll. INCO; 1 hembra, Concepción 27-1-

58 JAC. coll larvas en betarragas; 1 macho, Concep. 24-1-58

JAC. coll. larvas en veterraga [sic]; 2 machos, Concep. 29-1-

58 JAC. Coll. Larvas en vetarraga [sic]; 2 machos, Concep.

29-158 JAC: Coll. Larvas en vetarragas [sic]; 1 macho, Con-

cepción 10-XI1-1958. Trampas Coll Foto trópica; 1 hembra,

Concepción 21-X1-1958. Trampas Coll Foto trópica; 1

macho, Concepción 12-11-58 J.A.C. coll Betarraga; 1 macho,

1 hembra, Concepción-29-1-58 JAC. Coll Larva en vetarraga

[sic); 1 macho, Concepción 3-XI1-1958. Trampas coll Foto

trópica; 2 machos, Concepción Lab. Entom. 28-1-72; 1

macho, Concepción 11-X-60 Trampas: coll Foto Tropica

[sic], 1 hembra, Concepción 27-XI1-58 Trampas: coll Foto

Trópica; 5 machos, 1 hembra, Concepción 27-1-58 JAC. Coll

Larvas de betarragas; 1 macho, Concepción 17-X-58. Tram-

pas Coll Foto Trópica; 1 hembra, Concepción 2-X1-52 JAC.

Coll; 1 hembra, Concepción 16-11-59 Trampas: Coll Foto tró-

pica; 3 machos, Concepción, 12-X1-58 Trampas: Coll Foto

tropica [sic], 1 macho, Concepción, 6-X11-58 Trampas: Coll

Foto trópica; 1 hembra, Concepción, 24-1-58. J.A.C. Coll.

Larvas en vetarragas [sic]; 2 hembras, Concepción, 14-X1-58

Trampas: Coll Foto tropica: 1 hembra, Concepción, 27-XI1I-

58 Trampas: Col Foto trópica; 1 hembra, Concepción, 17-X1-

1958- Trampas: Coll Foto trópica; 1 macho, Concepción 29-

1-58 J.A.C. Cuncunilla en Betarraga; 3 machos, Concepción

15-11-58 J.A.C. Coll Cuncunilla Beterraga [sic]; 1 hembra,

Concepción, 15-11-58 J.A.C. Coll Cuncunilla Betarraga; 2

machos, Concepción 15-11-58 Trampas Coll Foto tropica

[Sic); 1 hembra, Concepción 27-7-58. Trampas: Coll Foto tro-

pica [sic]; 1 macho, 2 hembras, Concepción, 17-X1-1958

Trampas Coll Foto trópica; 1 macho, Concepción, 16-XI-

1958 Trampas Coll Foto trópica; 2 machos, 1 hembra, Con-

cep. 27-Xi-57 JAC. Coll Larva en vetarraga [sic]; 1 hembra,

Concepción 2-XI-59 Trampas: Coll Foto tropica; 1 hembra,

Tobalaba 27.Dic.41; 1 macho, Tobalaba 20 nov.46; 1

hembra, Tobalaba 14-5-1948; 1 hembra, Tobalaba 14-1-1949;

1 macho, tobalaba 3-X1-1949; 1 macho, Tobalaba 19 Dic.

1946; 1 hembra, Tobalaba 20 nov 1946; 1 hembra, Tobalaba

14 Dic 1946; 1 hembra, Tobalaba 8 sep. 46; 1 macho, 4

hembras, Concep. 18-X1-57. JAC: Coll Trampas; 1 macho,

Concepción 13-XI1-58 Trampas: Coll Foto trópica; 1 macho,

Concepción 6-XI-58 Trampas Coll. Foto trópica; 1 macho,

Concepción 29-XII-58 trampas Coll foto tropica [sic]; 1

macho, Concepción 11 nov.1958 Trampas Coll Foto trópica;

1 hembra, Concepción 27-1-59 Trampas: Coll Foto tropica

[sic], 2 machos, Concepción 24-X1-1958 Trampas Coll Foto

tropica [sic]; 1 macho Concep. 24-X1-57 Goir Coll; 1 macho,

Concepción 12-XI11-58 Trampas: Coll Foto trópica; 1 macho,

Concepción 4-XI1-1958 Trampas Coll Foto trópica; 1 macho,

Concepción 16-X11-1958 Trampas Coll Foto trópica; 1

hembra, Concepción 27-1-58 JAC Coll Larva de Betarraga; 1

hembra, Termas de Rio Blanco Cautin [sic] 3.51; 1 macho,

Termas de Rio Blanco [sic] 11-51; 1 macho, Termas de Rio

Blanco Cautin [sic] 11.51; 1 macho, Termas de Rio Blanco

Cautin [sic] 3.57; 1 macho, 2 hembras, Lugar: Junin, Fecha:

71V76 P. Alcala Coll. EEASC N* 27-76 [sic]; 1 macho, Lu-

gar: Junin, Fecha: 3 11.76 R. Albana Coll. EESAC N? 28.76

[sic]; 2 machos, 1 hembra, Reg. Metropolitana S K.S. Pte. Al-

to Diciembre. 4, 1989 J. Apablaza. Medicago sativa [sic]. L.;

1 hembra, Concepción Villa Sta. Julia Km. 25-C/Bulnes 26-

marzo 1971. Trampas col. (paratipo Euxoa editae Angulo y

Jana). (MZUC)

Copitarsia humilis (Blanchard)

(Figs. 3, 15 y 16)

Polia humilis Blanchard, 1854, p. 79.

Copitarsia humilis (Blanchard). Hampson, 1906,

p. 183. Kóhler, 1951, p.175.

Macho: (Fig. 3). Cabeza con escamas y pelos de co-

lor marrón entremezclados con blanquizcos, la

misma situación en palpos, antenas ciliadas, las

cilias tan largas como el ancho del segmento res-

pectivo. Patagias y tégulas del tórax con escamas

blanquizcas y algunas castañas entremezcladas,

otras con los ápices de color marrón. Patas con

escamas blanquizcas entremezcladas con algunas

de color marrón, hacia el ápice de los segmentos

hay escamas blanquizcas, dando un aspecto

anillado. Ala anterior castaño ocrácea 2 veces

más larga que su ancho máximo, con 4 líneas

transversales, las 2 centrales son muy notorias;

mancha claviforme con escamas castaño ama-

rillentas bordeada con escamas de color marrón;

Gayana Zool. 5513), 1991

mancha orbicular redonda con escamas blanquiz-

cas, bordeada con escamas de color marrón;

mancha reniforme poco notable con escamas de

color blanquizco entremezcladas con algunas cas-

tañas, bordeada por escasas escamas de color

marrón, línea basal, línea anterior transversa y lí-

nea mediana poco notables. Alas posteriores de

longitud similar a su ancho máximo, color de fon-

do con escamas blanquizcas y castañas, las últi-

mas tienden a ser más predominantes en el borde

alar externo; mancha discoidal es sólo una línea

de color castaño claro. Abdomen con escamas cas-

taño claras y oscuras.

GeNITaLla: (Figs. 15 y 16). Valvas alargadas, 4 ve-

ces más largas que su ancho medial, débilmente

incurvadas en su borde ventral, con corona; har-

pes alargados, de base ancha atenuándose hacia

el ápice que es romo, no sobresale del borde dor-

sal de la valva; digitus alargado, atenuado hacia

el ápice que es romo, sobresaliendo del borde

ventral de la valva; brazos posteriores de la yuxta

muy largos (a lo menos 4 veces tan largo como su

ancho máximo); saccus ensanchado, de borde

posterior aguzado; uncus alargado, de grosor más

o menos uniforme y ápice levemente aguzado, en

el borde dorsal cercano al ápice, se ubican 2 pla-

cas con 6 cerdas bien desarrolladas a cada lado.

Aedeagus de vesica recta, algo helicoidal. Cornu-

ti en la base de la vesica formado por 10 espinas

bien desarrolladas, otras más atenuadas, estas es-

pinas no circundan por completo la base de la ve-

sica.

EXPANSIÓN ALAR: 27 mm. (n= 1)

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Argentina: Mendoza, San Juan.

(Ex: Kóhler, 1951) Chile: Coquimbo (IV Región) Tres Puen-

tes (XII Región).

MATERIAL EXAMINADO

l macho, Tres Puentes dic. 1952. Rodríguez: col. 15013.

(MZUC)

Copitarsia naenoides (Butler)

(Figs. 4,5,6, 17,18 y 19)

Anomogyna naenoides Butler. 1882, p. 173.

Anomogyna nanioides Butler. Bartlett-Calvert,

1893 (1894), p. 173 (Lapsus calamorum).

(53)

Anomogyna naenioides Butler. Hampson, 1906,

p. 185 (Lapsus calamorum).

Copitarsia naeniodes (Butler). Hampson, 1906, p.

185 (Lapsus calamorum).

Copitarsia naeniodes (Butler). Kóhler, 1951, p.

173; Kóhler, 1958, p. 58.

Euxoa editae Angulo y Jana-Sáenz, 1982, p. 13

(error de identificación). González, 1989.

Macho: Morfo-cromático: Gris blanquizco (Fig.

4), cabeza castaño anaranjada con moteado gris

oscuro, la misma situación en palpos; antenas

con densas cilias subiguales al ancho del segmen-

to antenal. Tórax castaño anaranjado con mote-

ado gris oscuro; tégula con pelos y escamas casta-

ño anaranjados entremezclados con algunos pe-

los castaños que presentan los ápices castaño os-

curo. Patas con escamas gris oscuras moteadas

con blanco, excepto en el ápice de los segmentos,

donde hay escamas blancas, dando un aspecto

anillado, espolones tibiales con escamas castaño

oscuras entremezcladas con escamas blanquiz-

cas, las tibias no presentan espinas, tarsos con

abundantes espinas rojizas. Alas anteriores, color

de fondo castaño oscuro; banda sub-basal casta-

ño amarillenta limitada por escamas castaño os-

curas; banda anterior transversa castaño clara

con algunas escamas gris oscuras entremezcladas,

limitada por escamas marrón; mancha clavifor-

me moderada y ancha gris oscura bordeada por

escamas marrón; mancha orbicular circular mo-

derada, con escamas castaño amarillentas borde-

ada por escamas marrón; mancha reniforme con

escamas castaño amarillentas entremezcladas

con algunas anaranjadas, bordeada por escamas

marrón; línea posterior transversa castaño ana-

ranjada bordeada por algunas escamas marrón;

línea subterminal formada por escamas castaño

anaranjadas con algunas marrón entremezcladas,

excesivamente dentada (muy sinuosa), bordeada

por un color más claro; línea terminal formada

por una serie de puntos marrón. Alas posteriores

castaño claras, con una franja y el tercio distal

castaño claro más acentuado. Abdomen con es-

camas y pelos castaño anaranjado.

GenITALIa: (Figs. 17 y 18). Valvas alargadas, 4 ve-

ces más largas que su ancho medial, levemente

incurvadas en su borde ventral, con extermos

aguzados, con corona; harpes alargados, de base

ancha, aguzándose hacia el ápice, curvado hacia

el borde dorsal de la valva, sin sobresalir de ésta;

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O., ANGULO

digitus alargado, de ápice romo, que sobresale del

borde ventral de la valva; yuxta continua en for-

ma de U; saccus ensanchado, de borde posterior

aguzado; uncus de tamaño moderado, grueso, el

ápice termina en una espina corta y gruesa, muy

próximo a la región apical, en la parte dorsal se

ubican 2 placas con abundantes espinas esparci-

das cortas y gruesas. Aedeagus de vesica recta, al-

go helicoidal en el tercio basal, 3 veces más largo

que la funda del aedeagus proyectado anterior-

mente; cornuti en la base de la vesica, formado

por una serie de espinas cortas y gruesas bien de-

sarrolladas, esta serie de espinas se prolonga un

poco anteriormente en dirección oblicua, hacién-

dose cada vez más inconspicuas hasta desapare-

cer, lo que ocurre antes del final del tercio basal

de la vesica.

HemBRa: Similar al ancho, antenas con cilias muy

cortas, apenas visibles.

GENITALIa: (Fig. 19). Bursa copulatrix bilobulada;

corpus bursae en el dorso interno presenta el sig-

num, formado por numerosas microespinas dis-

puestas en varias filas paralelas que dan la impre-

sión de una franja más o menos ancha; cervix

bursae piriforme, subgloboso desde cuyo ápice se

origina el ductus seminalis; ductus bursae mode-

rado, sterigma subtriangular muy quitinizado;

apófisis posteriores el doble del ancho de las ante-

riores, que se ensanchan en su tercio basal para

luego hacerse más delgadas.

EXPANSIÓN ALAR: X= 27.5 mm. (n=8).

NOMBRES VERNACULARES: “Cuncunilla del lino”, “Po-

lilla chica de la vid”, “Cuncunilla”.

PLANTAS HOSPEDADORAS: Medicago sativa (alfalfa),

Lolium multiflorium (ballica), Beta vulgaris var.

hortensis (betarraga), Allium cepa (cebolla), As-

paragus officinalis (espárrago), Linum usitatissi-

mum (lino), Solanum tuberosum (papa), Cheno-

podium quinoa (quínoa), Beta vulgaris var. altis-

sima (remolacha), Vitis vinifera (vid).

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Argentina: Tucumán, Buenos

Aires, Taldil, Pampa, La Paz, Córdoba, La Rioja, Mendoza,

Cipolletti, Río Negro, Esquel, Chubut, Cuyo (Kóhler, 1951).

Chile: Santiago (Región Metropolitana), Concepción,

Mulchén, Bulnes (VIII Región), Termas de Río Blanco,

Cautín, Traiguén (IX Región), Osorno (X Región), Puerto

Natales, Magallanes (XII Región).

233

MATERIAL EXAMINADO

73 ejemplares (53 machos, 20 hembras). 1 hembra, Concep-

ción, 2-XI-59 Trampas: Coll Foto Tropica [sic]; 1 macho,

Concepción 17-X1-60 Trampas: Coll Foto trópica; 1 macho,

Concepción, 13-11-61 Trampas: Coll Foto tropica [sic); 1

macho, Concepción 19-11-61 Trampas: Coll Foto tropica [sic];

1 macho, Concepción 12-X11-60 Trampas: Coll Foto tropica

[sic]; 1 macho, Concepción 3-11-60 Tramp. coll Foto tropica

[sic]; 1 macho, Concepción 14-X1-60 Trampas: col; 1 macho,

Concepción 11-X-60 Trampas. Coll Foto tropica [sic); 1

macho, Concepción 14-X-60 Trampas: Coll Foto tropica

[sic]; 1 macho, 1 hembra Concepción 7-X11-60 Trampas: Coll

Foto tropica [sic]. Paratipo (Euxoa editae Angulo y Jana); 1

macho, Concepción 11-11-61 Trampas: Coll Foto tropica [sic];

1 macho, Concepción 16-11-60 Trampas: Coll; 1 macho, Con-

cepción 19-XII-60 Trampas: Coll Foto trop. [sic]; 1 macho,

Concepción 17-11-61 Trampas: Coll Foto tropica [sic); 1

hembra, Concepción 6-X1-59 Trampas: Coll Foto tropica

[sic]; 2 hembras, Concepción 27-X1-59 Trampas: Coll Foto

trópica; 1 hembra, Concepción 17-X11-58 Trampas: Coll Fo-

to tropica [sic]; 1 macho, Chiguayante (Manquimavida) Hu-

lot: Col 31-X-61 Foto tropica [sic]; 2 machos, Chiguayante

(Manquimavida) 31-X-61 Hulot: Coll Foto tropica [sic]; 1

macho, Chiguayante Manquimavida 30-X-61 Hulot: Coll

Foto tropica [sic]; 1 macho, Chiguayante Manquimavida 29-

X-61 Hulot: Coll Foto trópica; 1 hembra, Chiguayante Man-

quimavida Foto tropica [sic] 27-X1-61 Hulot: Coll; 1 macho,

Chiguayante Manquimavida. 9-XI-61 Hulot. Coll Foto tropi-

ca [sic]; 1 hembra, Termas de Rio Blanco Cautin [sic] V-57; 1

macho, Sta. Julia K.25. C. Bulnes 25.X-1981 Trampas: Coll;

1 macho, Traigen [sic] 31/2/88 T. de Luz; 1 macho, C. Bulnes

K.25 26-1-1982 Trampas: Col; 3 machos, 1 hembra, Pto. Ná-

tales [sic] feb-1953 Alarcón: coll Chile Magallanes; 1 macho,

Pto Natales feb-1953 Alarcón: Col; 1 macho, Pto Natales

feb-1953 Chile-Magall. Alarcón: Coll; 1 macho, C. Bulnes

[sic] K.25 K.25 26 enero 1982 Trampas: Coll; 1 hembra, C.

Búlnes K.25 19-1-1962 Trampas: Col; 1 macho, C. Búlnes

K.25 22-1-82 Trampas: Coll; 2 machos, C. Bulnes K.25 23-1-

1982 Trampas: Coll; 1 macho, Concepción 4-X1-59 Trampas:

Col; 1 hembra, Concepción 22-11-61 Trampas: Coll Foto tró-

pica; 1 macho, Villa Sta. Julia Km. 25 C. Bulnes 9-nov-1981

Trampas: Coll. Halotypus (Euxoa editae Angulo y Jana); 1

macho, Concepción 16-X1-60 Trampas: Col Foto Trópica.

Paratipo (Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho, Villa Sta.

Julia Km. 25 C. Bulnes 4-nov-1981 Trampas: Coll Paratipo

(Euxoa editae Angulo y Jana); 2 machos, 1 hembra, Chile-

Concepción 1-15 octubre 1987 Trampa U.V. Col. Paratipo

(Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho, Concepción 30-1-68

Trampas: Coll Foto Tropica [sic]. Paratipo (Euxoa editae An-

gulo y Jana); 1 macho Sta. Julia K.25 C. Bulnes 21-X-1981

Trampas: Coll Paratipo (Euxoa editae Angulo y Jana); 2

machos, Concepción 12-X11-60 Trampas: Coll Fóto Tropica

[sic] Paratipo (Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho, Con-

cepción 21-X-60 Trampas: Coll Foto Tropica [sic] Paratipo

(Euxoa editae Angulo y Jana); 1 hembra, Los Maitenes Cord.

Santiago 1300. 1850 m. 14-oct-1954 Coll: L.F. Peña Paratipo

(Euxoa editae Angulo y Jana); 1 hembra, Concepción 28-XI-

61 Trampas: Coll Foto Tropica [sic] Paratipo (Euxoa Editae

Angulo y Jana); 1 hembra, Termas de Rio Blanco Cautin [sic]

11.51; 1 macho, Sta. Julia K.25. C. Bulnes 31-X-1981 Tram-

pas: Coll Paratipo (Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho,

Gayana Zool. 55(3), 1991

Concepcion [sic] 15-X11-60 Trampas: Coll, Fóto Tropica [sic]

Paratipo (Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho, Concep-

ción 7-1-61 Trampas: Coll Foto Tropica [sic] Paratipo (Euxoa

editae Angulo y Jana); 1 macho, Concepción 17-X1-60 Tram-

pas: Coll Fóto tropica [sic] Paratipo (Euxoa editae Angulo y

Jana); 1 macho, 1 hembra, Concepción 10-XI1-60 Trampas:

Coll Fóto Tropica [sic] Paratipo (Euxoa editae Angulo y Ja-

na); 1 macho, Concepción 6-11-61 Trampas: coll Fóto Tropica

[sic] Paratipo (Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho, Con-

cepción 21-X1-60 Trampas: Coll Fóto tropica [sic] Paratipo

(Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho, 1 hembra, Concep-

cion [sic] 16-X11-60 Trampas: Coll Fóto Tropica [sic] Parati

po (Euxoa editae Angulo y Jana); 1 macho, Guayacán San-

tiago 24.X.51 T. Ramir Paratipo (Euxoa editae Angulo y Ja-

na); 1 hembra, Chiguayante (Manquimavida) 27-X11-61 “Hu-

lot: Coll Foto Tropica [sic] Paratipo (Euxoa editae Angulo y

Jana); 2 hembras, Quillón 21-X1-87 Tramp: Coll; 1 macho,

Nueva Aldea 2 nov. 1984 Gonzalez [sic] Coll; 1 macho, An-

gol Chile 10 oct. 1984 D.S. Bullock. (MZUC)

Copitarsia patagonica Hampson

(Figs. 7, 20 y 21)

Copitarsia patagonica Hampson, 1906, p. 185

Kóhler, 1951, p. 174.

Macho: (Fig. 7). Cabeza con pelos amarillos entre-

mezclados con pelos castaño oscuros, la misma si-

tuación en palpos; antenas con densas cilias, en el

borde de los ojos presenta largas cilias curvándo-

se sobre ellos. Patagias y tégulas del tórax con es-

camas y pelos amarillentos entremezclados con

algunos de color castaño oscuro; patas con las ti-

bias de color castaño oscuro entremezclados con

algunos pelos amarillentos, sin espinas, tarsos

con escamas de color castaño oscuro anillados

con escamas de color blanquizco, con espinas.

Ala anterior 2 veces más larga que su ancho má-

ximo, color de fondo con escamas castaño claras;

línea basal ondulada, más marcada en su margen

costal, luego es poco notable; línea anterior trans-

versa poco notable de color marrón, siendo más

acentuada en su margen costal, suavemente on-

dulada hacia el margen interno, con escamas cas-

taño oscuras a castaño claras; mancha orbicular

pequeña, redonda con escamas amarillentas bor-

deada de escamas de color marrón, en el centro

se ubican algunas escamas de color castaño oscu-

ras; línea mediana muy marcada en el margen

costal, mientras que en el margen interno es poco

notable; mancha reniforme con escamas blan-

quizcas y castaño claras, bordeada por escamas

de color marrón oscuro, siendo más acentuadas

hacia el margen externo; línea posterior transver-

159)

sa ondulada con escamas castaño claras entre-

mezcladas con algunas escamas castaño oscuras;

línea subterminal caracterizada por puntos dis-

continuos de escamas de color marrón, más acen-

tuados en el margen costal; mancha apical ausen-

te; línea terminal con puntos de color castaño os-

curos. Ala posterior castaño amarillenta. Abdo-

men con pelos y escamas castaño amarillentas.

GenitaLia: (Figs. 20 y 21). Valvas alargadas, 4-44

veces más largas que su ancho medial, con una

escotadura poco pronunciada al llegar al ápice,

con corona; harpes alargados, de grosor más o

menos uniforme y ápice romo, muy cercano al

borde dorsal de la valva; digitus de base ancha,

siendo en su borde ventral abruptamente ondula-

do y de ápice romo; yuxta caracterizada por un

hueco redondeado, limitado en ambos lados por

una estructura digitiforme, algo gruesa; saccus

ensanchado en su base y de borde posterior agu-

zado; uncus grueso, de tamaño moderado, en el

borde dorsal cercano a ápice se ubican 2 placas

de cerdas cortas y gruesas. Aedeagus de vesica al-

go helicoidal. Cornuti en la base de la vesica for-

mado por una serie de espinas de distintos tama-

ños y grosor, algunas bien desarrolladas, estas es-

pinas se prolongan un poco oblicuamente, hacién-

dose cada vez más inconspicuas, sin circundar

completamente la base de la vesica.

EXPANSIÓN ALAR: 30 mm. (n= 1)

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Argentina: Patagonia Andes,

Chubut, Valle Lago Blanco (Hampson, 1906) Pampa del Ce-

bo, Mendoza (Borsani), Neuquén, Nahuel Huapi (Kóhler,

1951) Chile: Termas de Río Blanco Cautín (IX Región).

MATERIAL EXAMINADO:

l macho, Termas de Río Blanco Cautín 11-67 (MZUC)

Copitarsia clavata (Kóhler) n. comb.

(Figs. 8, 22 y 23)

Cotarsina clavata Kóhler, 1951, p. 166; Kóhler,

1958, p. 61.

Macho: (Fig. 8). Cabeza con pelos blanquizcos

entremezclados con algunos blanquizcos con los

extremos de color marrón, palpos alargados con

pelos de color castaño oscuro entremezclados

con algunos blanquizcos, último segmento del

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO

palpo sin pelos, antenas con densas cilias, borde

de los ojos con largas cilias curvándose sobre

ellos. Tórax de patagias con escamas y pelos blan-

quizcos entremezcladas con algunas castañas,

con una línea transversal de color marrón, tégu-

las con pelos y escamas castaño amarillentos. Pa-

tas con escamas blanquizcas, tarsos con escamas

de color marrón anillados con escamas blanquiz-

cas, con espinas. Alas anteriores 2 veces más lar-

gas que su ancho máximo, color de fondo con es-

camas castaño claras entremezcladas con algunas

de color castaño oscuro, las bandas contrastan

con el color de fondo; línea basal poco notable; lí-

nea anterior transversa curvada hacia el exterior;

mancha claviforme muy marcada, con escamas

blanquizcas bordeada con escamas de color

marrón; mancha orbicular redonda con escamas

blanquizcas bordeada con escamas de color

marrón, en el centro más oscura; banda mediana

con escamas de color marrón, se excurva brusca-

mente bajo la reniforme para volver a su trayecto

normal; mancha reniforme ancha, con escamas

blanquizcas entremezcladas con algunas de color

marrón, bordeada sobre todo en el margen inter-

no por escamas de color marrón; línea posterior

transversa dentada, hacia el exterior bordeada

por escamas marrón y hacia el interior con esca-

mas blanquizcas; línea subterminal representada

por manchas de color marrón; mancha apical

ausente; línea terminal representada por pe-

queñas manchas de escamas de color marrón.

Alas posteriores con escamas blanquizcas. Abdo-

men con escamas castañas.

GeniTaLla: (Figs. 22 y 23). Valvas alargadas, 3/4

veces más largas que su ancho medial con una es-

cotadura poco pronunciada al llegar al ápice, con

corona; harpes alargados de grosor más o menos

uniforme y de ápice romo sin acercarse al borde

dorsal de la valva; digitus de grosor más o menos

uniforme, con su borde ventral relativamente li-

so; yuxta caracterizada por una escotadura re-

dondeada, limitada en ambos lados por una

estructura digitiforme algo alargada; saccus en-

sanchado, de borde posterior aguzado; uncus

alargado, de grosor más o menos uniforme, en el

borde dorsal cercano al ápice se ubican 2 placas

de cerdas cortas y gruesas. Aedeagus de vesica al-

go helicoidal. Cornuti en la base de la vesica for-

mado por una serie de espinas de distintos tama-

ños y grosor, algunas bien desarrolladas, otras es-

pinas menos desarrolladas se prolongan un poco

oblicuamente, haciéndose cada vez más inconspi-

cuas, sin circundar completamente la base de la

vesica.

EXPANSIÓN ALAR: X= 27 mm. (n=3).

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Argentina: Comodoro Rivada

via, Chubut (Prov) (Kóhler, 1951). Chile: Magallanes (XI!

Región).

MATERIAL EXAMINADO:

3 ejemplares (3 machos) 1 macho, Tres puentes dic. 1952

Rodríguez: Col. Chile Magallanes; 1 macho, Tres puentes

[sic] dic. 1952 Rodríguez: Col. Chile Magallanes: 1 macho,

Pto. Nátales [sic] Feb.-1953 Alarcón: Coll Magallanes Chile.

(MZUC)

Copitarsia basilinea Kóhler

(Figs. 9, 24 y 25)

Copitarsia basilinea Kóhler, 1958, p. 59.

Macho: (Fig. 9). Cabeza con el palpo labial cubier-

to de escamas color marrón entremezcladas con

escamas blanquizcas; frente con escamas castaño

claras y pelos blanquizcos entremezclados con

pelos castaño claros; se ubican 2 líneas transver-

sales de color marrón; antenas ciliadas; las cilias

tan largas como en el ancho del segmento respec-

tivo. Patagias y tégulas del tórax con escamas

castañas entremezcladas con escamas y pelos

blanquizcos; patas con escamas de color marrón

entremezcladas con escamas blanquizcas, hacia

el ápice de los segmentos hay escamas blanquiz-

cas, dando un aspecto anillado, los espolones ti-

biales llevan escamas blanquizcas con algunas

marrón, entremezcladas. Ala anterior castaño os-

cura, 2 veces más largas que su ancho máximo;

banda basal escasamente notable; salvo algunas

manchas de color marrón; mancha claviforme

semi-oval con escamas blanquizcas con algunas

de color marrón entremezcladas, bordeada con

escamas de color marrón; entre la orbicular y re-

niforme hay un color negruzco al igual que en la

base mediana del ala; mancha orbicular sub-oval

con escamas blanquizcas bordeada con escamas

de color marrón, en el centro presenta escamas

de color marrón; mancha reniforme normal. Ala

posterior ahumada hacia el margen externo. Ab-

domen con pelos y escamas de color castaño cla-

ras, entremezcladas con algunas castaño oscuras.

Gayana Zool. 55(3), 1991

GENITALIA: (Figs. 24 y 25). Valvas alargadas, 41

veces más largas que su ancho medial, con una

escotadura al llegar al ápice, con corona; harpes

alargados, de base ancha, y ápice romo, incurva-

do hacia el borde dorsal de la valva, sobresalien-

do de ésta; digitus alargado, ondulado en su bor-

de dorsal, de ápice romo, apenas sobresale del

borde ventral de la valva; yuxta caracterizada

por una escotadura redondeada, limitada en am-

bos lados por una estructura digitiforme, alarga-

da y gruesa; saccus ensanchado, de borde poste-

rior aguzado; uncus alargado, de grosor más o

menos uniforme, en el borde dorsal cercano al

ápice se ubican 2 placas de cerdas cortas y

gruesas, reunidas en un sector. Aedeagus de vesi-

ca recta algo helicoidal, 3 a 3/4 veces más larga

que la funda del aedeagus proyectado ante-

riomente. Cornuti en la base de la vesica formado

por 19 espinas de distinto tamaño, algunas bien

desarrolladas.

EXPANSIÓN ALAR: 29 mm. (n= 1).

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Argentina (Kóhler, 1958), Co-

quimbo (IV Región), Santiago (Región Metropolitana), Ter-

mas de Río Blanco (IX Región).

MATERIAL EXAMINADO

1 macho, Termas de Río Blanco 18-4-62 Krahmer. (MZUC)

Copitarsia anguloi Castillo n. sp.

(Figs. 10, 26 y 27)

Macho: (Fig. 10). Cabeza con escamas y pelos cas-

taño negruzcos, la misma situación en palpos y

éstos alcanzan la base antenal, segundo segmento

del palpo en largo 2/3 del diámetro ocular; frente

con un proceso cónico truncado, con escamas y

pelos castaño negruzcos, bordes oculares supe-

riores laterales con cilias castaño oscuras; antenas

segmentadas con cilias subiguales al ancho del seg-

mento. Patagias y tégulas del tórax con esca-

mas normales y piliformes de color castaño oscu-

ro; patas con escamas negruzcas, excepto en el

ápice de los segmentos, donde hay escamas blan-

quizcas, espolones tibiales cubiertos con escamas

oscuras. Ala anterior 2 veces más larga que su

ancho máximo, color de fondo castaño oscuro;

bandas transversales inconspicuas; mancha clavi-

forme subtriangular con escamas castaño oscuras

bordeadas con escamas de color marrón; mancha

orbicular sub-oval, relativamente pequeña, 1/3 de

la mancha claviforme, con escamas castaño oscu-

ras bordeadas con escamas de color marrón;

mancha reniforme grande, 2 a 3 veces mayor que

la claviforme, con escamas blanquizcas y algunas

escasas escamas castaño oscuras mezcladas, bor-

deada con escamas de color marrón, excepto en

su borde inferior; banda subterminal representa-

da por 8 a 9 manchas de escamas blancas; esca-

mas del borde alar externo de igual color que las

escamas del fondo. Ala posterior 1.2 veces más

larga que su ancho máximo; color de fondo con

escamas y pelos blancos, con el tercio alar exter-

no bruscamente oscuro; escamas del borde alar

externo blancas; cara ventral de ambas alas con

escamas y pelos castaño oscuros; el área basal y

central del ala posterior posee escamas y pelos

blancos y mancha discal con escamas castaño Os-

curas. Abdomen con escamas y pelos negruzcos,

siendo en el vientre más oscuros.

GenrTaLia: (Figs. 26 y 27). Valvas alargadas 3

veces más largas que su ancho medial, con una

escotadura poco pronunciada al llegar al ápice,

con corona; harpes alargados, de base ancha y

ápice romo, alcanzando más allá del borde dorsal

de la valva; digitus alargado, grueso, atenuado

hacia el ápice, incurvado en su parte media hacia

el borde ventral de la valva, sin sobresalir de éste;

yuxta caracterizada por una escotadura redonde-

ada, limitado en ambos lados por una estructura

digitiforme algo alargada y gruesa; saccus en-

sanchado, de borde posterior aguzado; uncus cur-

vado en ángulo recto desde su origen, grueso, el

ápice termina en una pequeña espina, en el borde

dorsal cercano al ápice se ubican 2 placas de cer-

das cortas y gruesas. Aedeagus de vesica recta al-

go helicoidal; cornuti en la base de la vesica for-

mado por espinas bien desarrolladas y otras de

menor tamaño, siendo algunas muy inconspi-

cuas, éstas no circundan completamente la base

de la vesica.

OBSERVACIONES: Esta especie descrita se diferencia

de las otras que componen el género en presentar

las alas anteriores castaño oscuras a negruzcas,

con la mancha reniforme blanca, las alas poste-

riores blancas con el tercio externo bruscamente

oscuro. La genitalia presenta el harpe más allá del

borde dorsal de la valva; esto nos revela que se

trata de una nueva especie.

EXPANSIÓN aLaR- X =26 mm. (n=2).

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Chile: Angol (IX Región), Con-

cepción (VIII Región).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho (Holotipo) Angol, Chile. 28 Sep. 1984 D.S. Bullock;

1 macho (Paratipo) Chiguayante Manquimávida 26-X-41

Hulot: Col. (MZUC)

ErmoLocía: Esta especie está dedicada al colega in-

vestigador Andrés O. Angulo.

Copitarsia paraturbata n. sp.

(Figs. 11 y 28)

Macho: (Fig. 11). Cabeza con escamas castañas

entremezcladas con marrón, palpo labial alarga-

do, alcanzando la base antenal cubierto con es-

camas castaño oscuras, antenas ciliadas, las cilias

tan largas como el ancho del segmento respecti-

vo; frente con una franja transversal de color

marrón. Patagias y tégulas del tórax con escamas

castañas, algunas blanquizcas entremezcladas,

vientre del tórax con escamas y pelos castaño os-

curos;, patas con escamas castaño oscuras, algu-

nas blanquizcas entremezcladas, hacia el ápice de

los segmentos hay escamas blanquizcas, dando

un aspecto anillado. Ala anterior castaño oscura

dos veces más larga que su ancho máximo; banda

basal escasamente notable; mancha orbicular re-

donda con escamas castaño amarillentas borde-

adas con escamas de color marrón; mancha reni-

forme poco notable con escamas castañas borde-

ada con escamas blanquizcas y en su borde inter-

no bordeada con escamas marrón; línea posterior

transversa con escamas castaño claras bordeada

con escamas castaño oscuras; línea subterminal

normal delineada con negruzco; mancha apical

castaño amarillenta; banda terminal representa-

da por siete manchas de escamas de color

marrón; escamas del borde alar externo castañas.

Ala posterior de longitud 1.25 veces más larga

155)

que su ancho máximo, color de fondo con esca-

mas blanquizcas y con algunos pelos castaño cla-

ros, las escamas tienden a hacerse más castañas

en el tercio externo alar; mancha discoidal semi-

lunar con pelos castaños. Abdomen con escamas

y pelos castaño oscuros y castaño claros entre-

mezclados.

GENITALIA: (Fig. 28). Valvas alargadas, 4 veces más

largas que su ancho medial, con un ensancha-

miento en su parte media, atenuándose hacia el

ápice romo, en la región cercana al ápice se incur-

va bruscamente hacia el borde dorsal de la valva;

digitus alargado, de base ancha, disminuyendo de

grosor hasta llegar al ápice que es romo, apenas

sobresale del borde ventral de la valva; yuxta ca-

racterizada por una pequeña escotadura, limitada

en ambos lados por una estructura que semejan 2

ganchos que se orientan en la misma dirección,

saccus de borde posterior aguzado; uncus alarga-

do, en su borde dorsal presenta un ensancha-

miento para estrecharse nuevamente hacia el ápi-

ce que es aguzado.

OBSERVACIONES: La especie descrita anteriormente

presenta las alas anteriores castaño oscuras con

la línea subterminal normal, delineada con

negruzco y la mancha orbicular normal. La geni-

talia presenta las valvas sin corona, lo que la dife-

rencia del resto de las especies del género.

EXPANSIÓN ALArR: 32 mm. (n= 1)

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Mamiña: Iquique (1 Región).

MATERIAL EXAMINADO

1 macho (Holotipo) Mamina [sic] 2.800 mt. Iquique Tarap.

X/X.51 L.E. Peña (MZUC)

ErimoLoGia: El nombre de esta especie obedece a

su similaridad, en la genitalia, a Copitarsia turba-

ta (Herrich-Scháffer).

Gayana Zool. 55(3). 1991

CLAVE PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LAS ESPECIES DE COPITARSIA HAMPSON. SEGÚN

MACULACIÓN ALAR.

Alas anteriores gris amarillentas; alas posteriores similares, oscureciéndose hacia el borde ex-

O A E C. naenoides (Butler).

(morfocromática: gris amarillenta)

Alas ¡anteriores y posteriores: no COMODATO 2

Alasipostenores castanOlOsCUraS ooo tds Paco SS 3

Alas posteriores no como arriba

Alas anteriores castaño ocráceas con 4 líneas transversales, las 2 centrales son muy notorias

C. humilis (Blanchard).

Alas anteriores y posteriores castaño oscuras; mancha claviforme tan grande como la renifo-

me y de color castaño muy oscuro, mancha orbicular de forma redonda .ooooccccicononicniccinnano

A o A A a otitis C. naenoides (Butler).

(morfocromática: gris castaña)

Alas posteriores y anteriores castaño oscuras, tendiendo a grisáceo: mancha claviforme nor-

mal; macha orbicular de forma subcircular ooo... C. turbata (Herrich-Scháffer).

(morfocromática: oscura)

Alas posteriores enteramente blancas, a excepción de las cilias que a veces son oscuras ...... 6

Alasipostenoresino comoda de it a CA 7

Alas anteriores castaño oscuras, línea subterminal excesivamente dentada (muy sinuosa) y

bordeada poriúnicolor másiclarO tt caccinon a oreosiaiosdoacanaasclcastancccento C. naenoides (Butler).

(morfocromática: gris blanquizca)

Alas anteriores castaño claras; línea subterminal moderadamente dentada inc...

A oO Eo MRS ee oo to SINO C. turbata (Herrich-Scháffer).

(morfocromática: clara)

Alas anteriores castaño oscuras a negruzcas con la mancha reniforme blanca; alas posteriores

blancas con el tercio externo bruscamente oscuro C. anguloi Castillo n. sp.

Alas anteriores MO COMO AD a 8

Alas anteriores castaño claras con las líneas transversales de color más oscuro, contrastando

con el color de fondo, orbicular y reniforme blanquizcas ........... C. clavata (Kóhler) n. comb.

Ada E O O O ON 9

Alas anteriores castaño oscuras con las manchas y líneas delineadas por un color más claro;

entre la orbicular y reniforme hay un color negruzco al igual que en la base mediana del ala;

OrbICUlAT UD a te RP ION C. basilinea Kóhler.

Alastanteniores Mo co A 10

10(9”) Alas anteriores castañas con las manchas y línea poco notables, sin embargo la mancha orbi-

cua C. patagonica Hampson.

Alas anteriores castaño oscuras con la línea subterminal normal y delineada con negruzco;

mancha Orbicular DOM A E C. paraturbata n. sp.

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO

CLAVE PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LAS ESPECIES DE COPITARSIA HAMPSON, SEGÚN LA

GENITALIA DE LOS MACHOS

] VANES MUCOSA A O C. paraturbata n. sp.

Pd Ea: 2)

2(1” Digitus de ápice truncado subcuadrangular....ooooncccnnnnnccicncc... C. turbata (Herrich-Scháffer).

ZA A OEA 3

3(2') Borde dorsal del digitus abruptamente ONdulado ...coooccnicnicccnocccicocinon C. humilis (Blanchard).

Borde dorsaldelldisitus alo mas débilmente ondulado coseno toco costo oacocaeccnocanconeos 4

4(3”) Brazos posteriores de la yuxta muy largos (a lo menos 4 veces tan largos como su ancho má-

O TO O ra an C. patagonica Hampson.

4” — Brazosposterioresde la yuxta cortos (alo más 3 veces tan largoscomo suancho máximo) ........ 5

5(4) Digitus muy largo (6 veces tan largo como su ancho máximo), sobresaliendo del borde

A A O o E ad LAN 7

SD eitusicortollalomaásicasi el doble desu ancho MAXIMO) occ occ oncccccnnncoo coco con concaancoodocnecciion 6

6(5') Harpe alcanza más allá del borde dorsal de la ValVa ooo... C. anguloi Castillo n. sp.

6” Harpe no alcanza el borde dorsal de la valva ..........ooo.onn.nnn....... C. clavata (Kóhler) n. comb.

ISNAULcUS con lasespinas dorsales ¡esparcidas ocoocceccenoconcinnoassoc conoce odas C. naenoides (Butler).

7” Uncus con las espinas cortas y reunidas en UN SECtOT ..ococcnconncninnincnnincnos C. basilinea Kóhler.

DISCUSION

Hampson en 1906 al crear el género Copitarsia

presenta una clave de maculación alar para sepa-

rar las distintas especies. Sin embargo, él conside-

ra caracteres que hacen referencia a ciertos colo-

res de las alas que no tienen tanta validez como

otros que pueden presentar los ejemplares, máxi-

me si se considera un material en mal estado y de-

colorado; actualmente el valor que presenta el

análisis de la genitalia es definitivo.

Por lo anteriormente señalado, se ha estable-

cido que de las 6 especies consideradas por

Hampson en 1906 (al crear el género), la especie

C. consueta (Walker) (sensu Hampson) corres-

ponde a una variación cromática de C. turbata

(Herrich-Scháffer), ya que Hampson separó am-

bas especies sobre la base de maculación alar (así

la forma más clara la identifica y describe como

C. consueta (Walker); más aún al leer la descrip-

239

ción original de Agrotis consueta hecha por

“Walker en 1856, se establece que las manchas

orbicular y reniforme son alargadas y estrechas”

(Angulo et al., 1990), separándose claramente de

C. turbata (Herrich-Scháffer), que presenta las

manchas orbicular de forma subcircular (de ma-

yor o menor tamaño) y la reniforme normal.

C. consueta (Walker) no está presente en

Chile, como ha sido señalada por algunos auto-

res; hasta ahora sólo se conoce su presencia en

Venezuela (procedencia del material de la

descripción original) y Argentina (de acuerdo a

Koóhler 1951).

Según Hampson (1906), sólo 3 de ellas: C.

naenoides (Butler), C. humilis (Blanchard) y C.

turbata (Herrich-Scháffer) estarían en Chile; sin

embargo ahora nos es posible afirmar que se halla

también en Chile C. patagonica Hampson;

mientras que la especie C. purilinea (Mabille) no

estaría presente.

Gayana Zool. 55(3), 1991

En relación al género Cotarsina creado por

Kóhler en 1951, cuya especie tipo es Cotarsina

clavata (Kóhler), los caracteres considerados son

poco relevantes para soportar el status genérico

diferente de este taxón, luego se ha establecido

que Cotarsina Kóhler es sinónimo de Copitarsia

Hampson, por lo que la especie analizada: Cotar-

sina clavata Kóhler es Copitarsia clavata

(Kóhler) n. comb.

Copitarsia naenoides (Butler) es considerada

como una especie policromática, debido a que

presenta 3 formas cromáticas: gris blanquizca;

gris castaña y gris amarillenta.

CONCLUSIONES

Después de realizado este trabajo, es posible

concluir que:

1. El género Copitarsia Hampson se compone

de 10 especies:

a) Copitarsia anguloi n. sp.

b) Copitarsia basilinea Kóhler.

e) Copitarsia clavata (Kóhler) n. comb.

d) Copitarsia consueta (Walker).

e) Copitarsia humilis (Blanchard).

f) Copitarsia naenoides (Butler).

g) Copitarsia paraturbata n. sp.

h) Copitarsia patagonica Hampson.

i) Copitarsia purilinea (Mabille).

3) Copitarsia turbata (Herrich-Scháffer).

De las 10 especies del género Copitarsia

Hampson, sólo 2 no están presentes en Chi-

le:

- Copitarsia consueta (Walker).

- Copitarsia purilinea (Mabille).

El género Copitarsia Hampson es endémico

americano; en Chile se distribuye desde

Iquique hasta Magallanes.

La especie conocida en Chile como Copi-

tarsia consueta (Walker) corresponde real-

mente a Copitarsia turbata (Herrich-

Scháffer).

La especie Copitarsia naenoides (Butler)

existe en Chile bajo la forma de especíme-

nes policromáticos, con 3 cromos identifi-

240

cables: gris blanquizco, gris castaño y gris

amarillento.

6. La especie Copitarsia turbata (Herrich-

Scháffer) presenta 2 formas cromáticas: cla-

ra y oscura.

7. El género Cotarsina Kóhler es sinónimo de

Copitarsia Hampson.

8. Finalmente la gran cantidad de material

examinado ha permitido describir dos

nuevas especies:

- Copitarsia paraturbata n. sp.

- Copitarsia anguloi Castillo n. sp.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos sinceramente a la Dra. María E.

Casanueva por sus sugerencias aportadas para

estructurar en una mejor forma el presente traba-

jo; a la vez agradecemos al Proyecto de Investiga-

ción N* 91.38.04-6 de la Universidad de Concep-

ción, por su apoyo e infraestructura otorgados a

la presente investigación.

LITERATURA CITADA

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738,

WALKER, F. 1865. List of the specimens of Lepidopteurs in-

sects in the collection of the British Museum. 32: 692-

693.

Manuscrito aceptado en junio de 1991]

241

Gayana Zool (3). 1991

FIGURAS 1-6: Fig. 1. Vista dorsal del macho de C. turbata (Herrich-Schaffer). (Morfo: oscuro). Fig. 2. Vista dorsal del

macho de C. turbata (Herrich-Schaffer). (Morfo: claro). Fig. 3. Vista dorsal del macho de C. humilis (Blanchard). Fig. 4

Vista dorsal del macho C. naenoides (Butler) (Morfocromático: gris blanquizco). Fig. 5. Vista dorsal del macho de C. na

enoides (Butler) (Morfocromático: gris castaño). Fig. 6. Vista dorsal del macho de C. naenoides (Butler) (Morfocromático

gris amarillento)

242

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO

FIGURAS 7-11: Fig. 7. Vista dorsal del macho de C. patagonica Hampson. Fig. 8. Vista dorsal del macho de C. clavata

(Kohler) n. comb. Fig. 9. Vista dorsal del macho de C. basilinea Kohler. Fig. 10. Vista dorsal del macho de €. anguloi Cas

tillo n. sp. Fig. 11. Vista dorsal del macho de C. paraturbata n. sp.

Gayana Zool. 55(3), 1991

FIGURAS 12-19: Fig. 12. Genitalia del macho, valvas y uncus C. turbara (Herrich-Scháffer). Fig. 13. Vesica insuflada de C.

turbata (Herrich-Scháffer). Fig. 14. Genitalia de la hembra, bursa copulatrix C. turbata (Herrich-Scháaffer). Fig. 15. Genita-

lia del macho, valvas y uncus C. Aumilis (Blanchard). Fig. 16. Vesica insuflada C. Aumilis (Blanchard). Fig. 17. Genitalia

del macho, valvas y uncus C. naenoides (Butler). Fig. 18. Vesica insuflada de C. naenoides (Buthler). Fig. 19. Genitalia de

la hembra, bursa copulatrix de C. naenoides (Butler).

244

Revisión del género Copitarsia: CASTILLO, E.E. Y A.O. ANGULO

FIGURAS 20-28: Fig. 20. Genitalia del macho, valvas y uncus de C. patagonica Hampson. Fig. 21. Vesica insuflada de €

patagonica Hampson. Fig. 22. Genitalia del macho, valvas y uncus de C. clavata (Kóhler) n. comb. Fig. 23. Vesica insufla-

da de C. clavata (Kóhler) n. comb. Fig. 24. Genitalia del macho, valvas y uncus de C. basilinea Kóhler. Fig. 25. Vesica in-

suflada de C. basilinea Kóhler. Fig. 26. Genitalia del macho, valvas y uncus de C. anguloi Castillo n. sp. Fig. 27. Vesica in-

suflada de C. anguloi Castillo n. sp. Fig. 28. Genitalia del macho, valvas y uncus de C. paraturbata n. sp.

245

Gayana Zool. 5513), 1991

FIGURAS 29-40: Figs. 29 y 30. Esquema de la pupa en vista lateral y ventral de C. turbata (Herrich-Schaffer) (Ex: Angulo y

Weigert, 1975). Fig. 31. Vista ventral de la terminalia de la pupa hembra de C. turbata (Herrich-Schaffer) (Ex: Angulo y

Weigert, 1975). Fig. 32. Vista frontal de la cabeza de la larva de C. turbata (Herrich-Schaffer). (Ex: Angulo y Weigert,

1975). Fig. 33. Ornamentación epidérmica corporal de la larva de C. turbata (Herrich-Scháffer). (Ex: Angulo y Weigert,

1975). Fig. 34. Vista interna de la mandíbula derecha de la larva de C. turbata (Herrich-Scháffer). (Ex: Angulo y Weigert,

1975). Fig. 35. Espinerete de la larva de C. rurbata (Herrich- Schaffer). (Ex: Angulo y Weigert, 1975). Fig. 36. Area ocular

de la larva de C. turbata (Herrich-Schaffer). (Ex: Angulo y Weigert. 1975). Fig. 37. Esquema de la quetotaxia corporal de la

larva de C. turbata (Herrich-Scháffer). (Ex: Angulo y Weigert. 1975). Figs. 38 y 39. Huevos en vista lateral y polar de C.

turbata (Herrich-Scháffer). (Ex: Angulo y Weigert, 1975). Fig. 40. Vista dorsal del área micropilar en huevos de C. Turbata

(Herrich-Scháffer). (Ex: Angulo y Weigert, 1975).

Gayana Zool. 55(3): 247-255, 1991

ISSN 0016-531X

THE AMERICAN GENERA OF ASILIDAE (DIPTERA): KEYS FOR

IDENTIFICATION WITH AN ATLAS OF FEMALE SPERMATHECA

AND OTHER MORPHOLOGICAL DETAILS. VI. 2. SUBFAMILY

STENOPOGONINAE HULL - TRIBES ACRONYCHINI,

BATHYPOGONINI (WITH DESCRIPTION OF A NEW GENUS) AND

CERATURGINI, AND A CATALOGUE OF THE NEOTROPICAL

SPECIES

LOS GENEROS AMERICANOS DE ASILIDAE (DIPTERA): CLA VES

PARA SU IDENTIFICACION CON UN ATLAS DE LAS

ESPERMATECAS DE LAS HEMBRAS Y OTROS DETALLES

MORFOLOGICOS. VII. 2. SUBFAMILIA STENOPOGONINAE HUL L-

TRIBUS ACRONYCHINI, BATHYPOGONINI (CON DESCRIPCION DE

UN NUEVO GENERO) Y CERATURGINI, Y CATALOGO DE LAS

ESPECIES NEOTROPICALES

Jorge N. Artigas” and Nelson Papavero'*

ABSTRACT

A catalogue of the neotropical species of Acronyches

Williston, 1908, only representative of the Tribe

Acronychini, is given. Carebaricus, gen. n. (type-species,

Stenopogon rionegrensis Lamas, 1971), the first neotropical

Bathypogonini, is described. A key to the two nearctic genera

of Ceraturgini is presented. Illustrations of the spermathecae

and other morphological details are included.

KEYWORDS: Insecta. Taxonomy. America. Asilidae.

Stenopogoninae. Acronychini. Bathypogonini. Ceraturgini.

“This research was supported by the Fundagao de

Amparo á Pesquisa do Estado de Sáo Paulo (Grants 85/1772-

S, 86/3327-1 and 87/3170-8).

**Universidad de Concepción, Facultad de Ciencias

Biológicas y de Recursos Naturales, Departamento de

Zoologia. Proyecto Dirección de Investigación. U. de

Concepción, N* 203812.

***Museu de Zoologia € Instituto de Estudos

Avancados, Universidade de Sao Paulo. Pesquisador do

Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e

Tecnológico (CNPq, Proc. n” 30.0994/79).

247

RESUMEN

Se presenta un catálogo de las especies neotropicales de

Acronyches Williston, 1908, único representante de la tribu

Acronychini. Se describe Carebaricus, gen. n. (especie-tipo,

Stenopogon rionegrensis Lamas, 1971), el primer

Bathypogonini neotropical. Una clave para los dos géneros

neárticos de Ceraturgini es dada, así como ilustraciones de

espermatecas y otros detalles morfológicos.

PALABRAS CLAVES: Insecta. Taxonomía. América. Asilidae.

Stenopogoninae. Acronychini. Bathypogonini. Ceraturgini.

INTRODUCTION

Previous parts of this series of studies, dealing

with the American genera of Asilidae, with

illustrations of the female spermathecae and

other morphological details, have been published

as follows: Part I (Key to subfamilies and

subfamily Leptogastrinae) in Gayana, Zool.

52(1-2):95-114, 1988; Part II (Dasypogoninae) in

Gayana Zool. 55(3), 1991

Gayana, Zool., 52(3-4): 199-260, 1988; Part III

(Trigonomiminae) in Bol. Soc. Biol. Concepción

60:35-41, 1989; Part IV (Laphriinae, except

Atomosiini) in Bol. Mus. paraense Emilio Goeldi,

Zool. 4(2):211-255, 1989; Part Y

(Stichopogoninae) in Bol. Soc. Biol. Concepción

61:39-47, 1990; Part VI (Laphriini (Atomosiini))

in Gayana, Zool. 55(1):53-87, 1991; Part VIL1

(Stenopogoninae, key to tribes) in Gayana, Zool.

55(2):139-144, 1991.

The methodology employed in the

dissection and preservation of the male

terminalia, female spermathecae and other

morphological parts is the same employed by

Artigas (1971).

Tribe ACRONYCHINI Artigas 8 Papavero

Genus Acronyches Williston

Acronyches Williston, 1908:388, fig. 103. Type-

species, Willistoni Hermann (sub. des.,

Hermann, 1921:121).

Megonyx Hull, 1962:312. Type-species,

giganteus Hull (orig. des.) = fenestratulus

Hermann.

Ref. Papavero (1971).

alexanderi Papavero, 1971:147. Type-locality:

Brazil, Sao Paulo, Mogi das Cruzes. Distr.

Brazil (Rio de Janeiro, Sáo Paulo). HT

MZUSP.

fenestratulus Hermann, 1921:122. Type-locality:

Paraguay, Santa Trinidad; Argentina.

Distr.- Brazil (Amazonas) to Argentina.

(Figs. 1, 2).

giganteus Hull, 1962:313, fig. 204 (Megonyx).

Type-locality: Brazil, Amazonas, Manaus.

HT AMNH.

geosarginus Papavero, 1971:148. Type-locality:

Surinam, Paramaribo. HT MZUSP.

imitator Hermann, 1921:122. Type-locality:

“Paraguay”. Distr. Brazil (Mato Grosso),

Paraguay. HT MUN.

maya Martin, 1968:180. Type-locality: Mexico,

Yucatán Chichen Itzá. HT CMNH.

meruuna Papavero, 1971:149. Type-locality:

Brazil, Espírito Santo, Linhares (Parque

Sooretama). HT MZUSP.

plutactites Papavero, 1971:150. Type-locality:

Costa Rica, Turrialba. HT MCZ.

rarus Martin, 1968:181. Type-locality: Mexico,

Morelos, Yautepec, HT CAS.

westcotti Martin, 1968:182. Type-locality:

Mexico, Nayarit, 20 mi. se. Ixtlán del Río.

HT CAS.

willistoni Hermann, 1921:121. Type-locality:

“Surinam”. HT MUN.

Tribe BATHYPOGONINI Artigas £« Papavero

The two genera of this tribe may be recognized by the following key:

1. Facial gibbosity not occupying entire length of face, but leaving a short flat area immediately

below antennae; proboscis about as long bristles of mystax, or subequal to length of

face. Occiput only with marginal bristles. Wing short, reaching only segment 5 of abdo-

men. Humeri without bristles. Femora incrassate. Pleura more or less bare. Male termina-

lia small and slender (Australia)

ro cióa Bathypogon Loew, 1851.

Face gradually sloping from antennal base to oral margin. Proboscis very long and slender,

much longer than length of bristles of mystax or length of face (Figs. 3-4). Occiput entirely

covered by dense bristles and bristle-like hairs. Wing slightly longer than abdomen. Hume-

ri with several strong bristles. Femora slender. Pleura pilose, especially above second co-

xa. Male terminalia very large and globose (Figs. 7-9). Female spermathecae as in Fig. 10

(Argentina, Chile)

248

A O E MO Del or A A er Carebaricus, gen. n.

American genera of Asilidae, Stenopogoninae: ARTIGAS, J.N.£ N. PAPAVERO

Genus Carebaricus, gen. n.

(Figs. 3-10)

Body length, 25-35 mm.

Face broad, 1/4 or more width of head (Fig.

4). Oral margin as wide as face (Fig. 3). Frons 1/3

wider than face. Facial gibbosity occupying 3/4

of face, gradually sloping from antennae to oral

margin. Mystax with long bristles on center of

oral margin and shorter on the upper part of the

gibbosity. Sides of oral margin bare, shining

posteriorly. Ocellar and frontal bristles and hairs

similar. Vertex and postocular area with

abundant bristles, mostly directed upwards and

backwards. Antennae situated on the upper 1/4

of head; pedicel and scape of about same length;

first flagellomere subequal in length to combined

length of scape and pedicel, attenuated on the

apical half; second flagellomere minute; third

flagellomere pointed at apex, 1/5 length of first.

Proboscis long, oval in cross-section, straight.

Palpus 2-segmented. Occiput entirely covered

with dense bristles and bristle-like hairs.

Thorax: Prosternum dissociated from

proepisternum. Pronotum with abundant

bristles, as long and strong as the postoculars.

Mesonotum more or less flat, covered with fine

scattered hairs. Dorsocentral bristles hair-like,

mostly apressed. Postsutural dorsocentrals

stronger. Bristles on humeral callus, prealar,

postalar, postcallar bristles and bristles on

posterior margin of mesonotum long and strong,

contrasting with the fine vestiture of the anterior

3/4 of the mesonotal disc. Scutellar disc with

scattered fine hairs, 8-10 marginal scutellar

bristles, similar to the ones on the posterior

callus. Mesopleura with fine hairs only.

Anepisternum bare. Katepisternum with strong

bristles.

Legs similar, with strong bristles similar to

the humeral ones. Claws acute. Pulvilli 3/4

length of claws. Femora slender, not incrassate.

Wing: Cell r, open; 2 submarginal cells

present; vein Ry slightly recurrent, ending before

wing apex; cell rs closed: anal cell closed at wing

margin or slightly open: cell m, extremely wide,

over twice as wide as high.

Abdomen: First abdominal segment as wide

as thorax. Abdomen - cylindrical, strongly

tapered, 7 tergites visible from above in males, 8

in females. Male terminalia (Figs. 7-9) not

rotated, epandrium small, divided into two

halves, curved in and back at the apex; gonopods

elongated; hypandrium free, large, globose,

curved in on posterior border. Aedeagus small,

with only one tube (Figs. 5-6). Female ovipositor

with strong spines on the acanthophorites.

Spermathecae with 3 elongated black capsules

and fine capsular ducts (Fig. 10).

Type-species, Stenopogon rionegrensis

Lamas, 1971.

Carebaricus rionegrensis (Lamas), n. comb.

Stenopogon rionegrensis Lamas, 1971:15, figs. 1,

2-4, 5. Type-locality: Argentina, Río

Negro, R. Colorado. Distr.- Argentina (Río

Negro, Neuquén). HT MZUSP.

Tribe CERATURGINI Artigas £ Papavero

Only two genera, both nearctic. No Neotropical representative is known.

KEY TO GENERA:

l. Apex of first flagellomere and of second flagellomere with deep clefts, in which is received the

attachment of the next succeeding SegMent ..oooococcccocnconocnocnconinnnanon Myelaphus Bigot, 1882

Antennae never as above. Spermathecae as in Figs. 11-12 .......... Ceraturgus Wiedemann, 1824

Gayana Zool. 5513). 1991

REFERENCES

ARTIGAS, JN. 1971. Las estructuras quitinizadas de la

spermatheca y funda del pene de los asílidos y su valor

sistemático a través del estudio por taxonomía

numérica. Gayana (Zool.) 18:1-106, 138 figs.

HERMANN, F., 1921. In L. Zúrcher, Dipteren-Ausbeute aus

Paraguay: Mydaiden und Asiliden, Arch. Natur-

gesch. 87 (A, 3):118-122.

HuLL, F.M., 1962. Robber flies of the world. The genera of

the family Asilidae. Smithson. Inst. Bull. 224(1):1-432;

(2):433-907, 2.536 figs.

Lamas M., G., 1971. Description of the first South American

species of Stenopogon Loew (Diptera, Asilidae).

Papéis avulsos Zool., S. Paulo 25(2):15-18, 5 figs.

MARTIN, C.H., 1968. New Mexican Acronyches and

Parataracticus (Diptera: Asilidae). Pan-Pacific

Entomologist 44(4):179-183.

PAPAVERO, N., 1971. Neotropical Acronyches (Diptera,

Asilidae), new or otherwise. Papéis avulsos Zool., S.

Paulo 23(16):145-151.

WILLISTON, S.W., 1908. Manual of North American Diptera

(3rd ed.), 405 pp., 163 figs. New Haven, Connecticut.

Manuscrito aceptado en junio de 1991.

250

American genera of Asilidae, Stenopogoninae: ARTIGAS, J.N.£ N. PAPAVERO

FIGURAS 1-2: Acronyches fenestratulus Hermann. 1, situation of the spermathecae in the abdomen. 2

2, spermathecae

(scales in mm).

251

Gayana Zool. 55(3), 1991

FIGURAS 3-5: Carebaricus rionegrensis (Lamas), head, in lateral (3) and frontal (4) views. 5, aedeagus in dorsal view (scales

in mm).

American genera of Asilidae, Stenopogoninae: ARTIGAS, J.N.£ N. PAPAVERO

FIGURAS 6-9: Carebaricus rionegrensis (Lamas). Aedeagus in lateral view (6). Male terminalia in lateral (7), dorsal (8) and

ventral (9) views (scales in mm).

(3), 1991

Gayana Zool.

FIGURA 10: Carebaricus rionegrensis (Lamas). 10, spermathecae (scale in mm).

254

American genera of Asilidae, Stenopogoninae: ARTIGAS, J.N.£ N. PAPAVERO

FIGURAS 11-12: Ceraturgus cruciatus Say. 11, situation of the spermathecae in the abdomen. 12, spermathecae (scales in

mm).

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REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

La revista Gayana dedicada al distinguido naturalista francés Claudio Gay, es el órgano oficial de Ediciones Universi-

dad de Concepción, Chile, para la publicación de resultados de investigaciones originales en el área de las Ciencias Na-

turales. Está compuesta de las series Botánica, Zoología y Miscelánea.

Las dos primeras aparecen en la forma de un volumen anual compuesto por cuatro números; Gayana Miscelánea es

aperiódica.

2. Gayana recibe trabajos realizados por académicos de la Universidad de Concepción y ocasionalmente los de otros inves-

tigadores nacionales o extranjeros de prestigio, elaborados según las normas del presente reglamento. La recepción es

permanente.

. Gayana acepta trabajos escritos en idioma español o inglés. La publicación en otros idiomas deberá ser consultada pre-

viamente al Director.

4. El manuscrito debe ser entregado en triplicado; una de las copias llevará las figuras originales.

. El Director de la revista, asesorado por el Comité de Publicación, se reserva el derecho de aceptar o rechazar el ma-

nuscrito.

6. El manuscrito será enviado a pares para su revisión técnica.

7. La primera prueba de imprenta será enviada al autor principal para su corrección antes de la impresión definitiva. Si

ello fuere imposible o dificultoso, la corrección será realizada por el Comité de Publicación.

. Los nombres científicos y las locuciones latinas serán las únicas que irán subrayadas en el texto. La primera vez que se

cite un organismo deberá hacerse con su nombre cientifico completo (género, especie y autor).

9. Las medidas deberán ser expresadas en unidades del sistema métrico; si fuera necesario agregar medidas en otros siste-

mas, las abreviaturas correspondientes deben ser definidas en el texto. Decimales con coma, no punto (Ejemplo: 0,5).

10. Las citas en el texto deben incluir nombre del autor y año [Ejemplo: Smith, J.G. (1952)]. Si hay varios trabajos de un

autor en un mismo año, se citará con una letra en secuencia adosada al año (1952a). Cuando hay más de dos autores to-

dos los nombres serán citados en la primera mención [Ejemplo: Smith, J.G., P.J. Jones and W.E. Williams (1981); las re-

ferencias posteriores serán: Smith ef al. (1981)].

11. La biliografía incluirá todas y sólo las referencias citadas en el texto, dispuestas por orden alfabético del apellido del pri-

mer autor, sin número que la anteceda. La literatura botánica será citada según el B-P-H (Botánico-Periodicum-

Huntianum) y la zoológica según el Style Manual of Biological Journals.

12. La nomenclatura de los trabajos botánicos y zoológicos se regirá por sus respectivos códigos.

13. Las ilustraciones y tablas deben ser adecuadas para, una vez reducidas, ocupar un ancho de 70 mm (una columna) o 150

mm (dos columnas) y una longitud no superior a 220 mm, incluido el espacio del texto explicativo.

14. Los dibujos deben ser de alto contraste y deben llevar una escala para facilitar la determinación del aumento.

15. Las figuras se numerarán en orden correlativo con números arábigos. Las tablas de igual modo con número romanos.

Cada tabla debe llevar un título descriptivo en la parte superior.

16. Las fotografías se considerarán figuras para su numeración. Serán en blanco y negro, brillantes, de grano fino y buen

contraste y deben ser acompañadas de una escala para la determinación del aumento.

17. En el reverso de las láminas originales se deberá indicar el nombre del autor, título del trabajo y número de las láminas.

18. Adjunto al manuscrito se entregarán en forma secuencial las explicaciones de cada una de las figuras.

19. El texto deberá contener: Título, título en inglés, nombre de los autores, dirección de los autores, Resumen, Abstract,

Keywords, Introducción, Materiales y Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones, Agradecimientos y Bibliografía.

20. El título debe ir todo escrito en letra mayúscula y expresar el contenido real del trabajo. Si incluye un nombre genérico

o especifico se indicará el rango sistemático inmediatamente superior.

21.Si por alguna circunstancia especial el trabajo debe ser publicado en forma diferente a las disposiciones anteriores, el

autor deberá exponer su petición al Director antes de enviarlo.

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RECOMENDACIONES PARA PRESENTAR LOS

MANUSCRITOS A GAYANA

INTRODUCCION, MATERIALES Y METODOS, RESULTADOS, DISCUSION, CONCLUSIONES,

AGRADECIMIENTOS, BIBLIOGRAFIA, son títulos y se escribirán con MAYUSCULAS

(AGRADECIMIENTOS).

Subtitulos: VERSALITA

Nombres de los géneros y de las especies (cuando encabezan un párrafo): negrita cursiva

Nombres de sinónimos: cursiva

Nombres científicos en el texto: cursiva

Material estudiado: ALTA (8/10)

Indice de nombres científicos: ALTA (8/10)

En el índice de nombres científicos los nombres válidos en negrita cursiva y los sinónimos en cursiva

Los tipos de letra se señalan en el original como sigue:

Tipo impreso Nombre En manuscrito

Un probable origen Redonda no se señala

VALD ALTA se subraya tres veces: VALD

MATERIAL ESTUDIADO Versalitas se subraya dos veces: Material estudiado

a) crecen bien baja no se señala

Bromus berterianus Cursiva se subraya una vez: Bromus berterianus

BROMUS ALTA CURSIVA se subraya cuatro veces: BROMUS

nota: negrita se subraya con una línea ondulada: Nota:

Bromus racemosus negrita cursiva se subraya dos veces, con una línea recta y otra on-

dulada: Bromus racemosus

GAYANA

ZOOLOGIA VOLUMEN55 NUMERO 3 1991

GAYANA

ZOOLOGIA , VOLUMEN 55 NUMERO 4 1991

135)

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS

Y DE RECURSOS NATURALES

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA

Andrés O. Angulo

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR:

Oscar Matthei J.

REPRESENTANTE LEGAL

Augusto Parra Muñoz

PROPIETARIO:

Universidad de Concepción

DOMICILIO LEGAL:

Víctor Lamas 1290, Concepción, Chile

EDITOR EJECUTIVO SERIE ZOOLOGIA

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COMITE ASESOR TECNICO

GLORIA ARRATIA María L. MORAZA

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JORGE N. ARTIGAS JOEL MINET

Universidad de Concepción, Chile. Muséum National d'Histoire Naturelle, Francia.

HuGo I. MOYANO

NIBALDO BAHAMONDE N. Universidad de Concepción, Chile.

Universidad de Chile, Chile.

JUAN C. ORTIZ

ARIEL CAMOUSSEIGHT Universidad de Concepción, Chile.

Museo Nacional de Historia Natural, Chile.

NELSON PAPAVERO

María E. CASANUEVA Universidade de Sáo Paulo, Brasil.

Universidad de Concepción, Chile.

GERMAN PEQUEÑO R.

RuTH DESQUEYROUX-FÁUNDEZ Universidad Austral de Chile, Chile.

Muséum d'Histoire Naturelle, Suiza.

LINDA M. PITKIN

RAMÓN FORMAS C. British Museum (Natural History), Inglaterra.

Universidad Austral de Chile, Chile

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JEAN-LOUP D'HONDT Universidad Metropolitana de Ciencias

Muséum National d'Histoire Naturelle, Francia. de la Educación, Chile.

CARLOS G. JARA HAROLDO TORO

Universidad Austral de Chile, Chile. Universidad Católica de Valparaíso, Chile.

ALBERTO P. LARRAIN W. CALVIN WELBOURN

Universidad de Concepción, Chile, The Ohio State University, U.S.A.

JUAN LÓPEZ GAPPA

Museo Argentino de Ciencias Naturales

“Bernardino Rivadavia”, Argentina.

ISSN 0016-531X

GIAWAUNA

ZOOLOGIA VOLUMEN 55 NUMERO 4 1991

INDICE / CONTENTS

ARTIGAS, J.N. AND N. PAPAVERO. The American genera of Asilidae (Diptera):

keys for identification with an atlas of female spermathecae and other

morphological details. VIL 3. Subfamily Stenopogoninae Hull - Tribes Dioctriini

AMM cai tiza 261

Los géneros Americanos de Asilidae (Diptera): claves para su identificación con

un atlas de las espermatecas de las hembras y otros detalles morfológicos. VII. 3.

Subfamilia Stenopogoninae Hull - Tribus Dioctriini y Echthodopini.

PARRA, L.E. Y C. P. SANTOS-SALAS. Trichopterygini Neotropicales II

(Lepidoptera: Geometridae): el complejo Rhopalodes Guenée, 1837 cocino... 267

Neotropical Trichopterygini II (Lepidoptera: Geometridae): the complex

Rhopalodes Guenée, 1857.

MOYANO, H.I. Bryozoa Marinos Chilenos VIII: una síntesis zoogeográfica con

consideraciones sistemáticas y la descripción de diez especies y dos géneros

MU 305

Bryozoa Marinos Chilenos VIIL: a zoogeographical synthesis with systematic

comments and the description of two new genera and ten new species.

YOUNG-DOWNEY, A. AND J. MORENO. A new species of Tropidurine lizard

(Squamata: Tropiduridae) from Los Andes of northern Chil8 ..ooccccnicncnncc.o..... 391

Una nueva especie de lagarto tropidurino (Squamata: Tropiduridae) de Los

Andes del norte de Chile.

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de ellos”.

CLAUDIO GA Y, Hist. de Chile. 1:14 (15848)

Portada:

Rhopalodes argentina Berg: genitalia, aedeagus y venación alar

del macho (ver págs. 270 y 299).

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE

EDITORA ANIBAL PINTO, $. A.

MAIPU 769, CONCEPCION-CHILE,

EN EL MES DE FEBRERO DE 1992,

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

PARA EDICIONES UNIVERSIDAD DE

CONCEPCION

Gayana Zool. 55(4): 261-266, 1991

ISSN 0016-531X

THE AMERICAN GENERA OF ASILIDAE (DIPTERA): KEYS FOR

IDENTIFICATION WITH AN ATLAS OF FEMALE SPERMATHECAE

AND OTHER MORPHOLOGICAL DETAILS. VII 3. SUBFAMIL Y

STENOPOGONINAE HULL — TRIBES DIOCTRIINI AND

ECHTHODOPINI*

LOS GENEROS AMERICANOS DE ASILIDAE (DIPTERA): CLAVES

PARA SU IDENTIFICACION CON UN ATLAS DE LAS

ESPERMATECAS DE LAS HEMBRAS Y OTROS DETALLES

MORFOLOGICOS. VII.3. SUBFAMILIA STENOPOGONINAE

HULL — TRIBUS DIOCTRIINI Y ECHTHODOPINI

Jorge N. Artigas** and Nelson Papavero***

ABSTRACT

A key is given for the two nearctic genera of Dioctriini and

the five genera of Echthodopini, with illustrations of the

spermathecae of some of those genera. Only one species of

Dioctriini and one of Echthodopini are known from the

neotropical region.

KEYWORDS: Insecta. Taxonomy. America. Key. Asilidae.

Stenopogoninae. Dioctriini. Echthodopini.

* This research was supported by the Fundagao de

Amparo á Pesquisa do Estado de Sao Paulo (Grants 85/1772-

Sh 86/3327-1 and 87/3170-8).

Universidad de Concepción-Facultad de Ciencias

Biológicas y de Recursos Naturales - Departamento de

Zoología. (Proyecto Dirección de Investigación N% 203812.

U. de Concepción) Proyecto Fondo Nacional de

Investigación Científica y Tecnológica, Chile: N* 92-0289.

[Parte].

“Museu de Zoologia é Instituto de Estudos

Avangados, Universidade de Sao Paulo. Pesquisador do

Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e

Tecnológico (CNPq, Proc. N* 30. 0994/79).

RESUMEN

Se presenta una clave para los dos géneros neárticos de

Dioctriini y los cinco géneros de Echthodopini, con

ilustraciones de las espermatecas de algunos de esos géneros.

Hay solamente una especie de Dioctriini y una de

Echthodopini conocidas en la región neotropical.

PALABRAS CLAVES: Insecta. Taxonomía. América. Clave.

Asilidae. Stenopogoninae. Dioctriini. Echthodopini.

INTRODUCTION

A Key to the tribes of Stenopogoninae has been

published in Part VIL1 of this series (Gayana

55(2): 139-144), and a key to the genera of the

tribes Acronychini, Bathypogonini and

Ceraturgini in Part VIL2 (Gayana 55(3): 247-

255. Previous papers in this series were published

as follows: Part I) (Key to subfamilies, subfamily

Leptogastrinae) in Gayana, Zool. 52(1-2): -95

Gayana Zool. 55(4), 1991

114, 1988; Part II (Dasypogoninae) in Gayana,

Zool. 52(3-4): 199-260, 1988; Part III

(Trigonomiminae) in Bol. Soc. Biol. Concepción

60: 35-41, 1989; Part IV (Laphriinae, except

Atomostini) in Bol. Mus. paraense Emilio Goeldi,

Zool. 4(2): 211-255, 1988; Part V

(Stichopogoninae) in Bol. Soc. Biol. Concepción

61: 39-47, 1990; Part VI (Laphriinae

(Atomosiini)) in Gayana, Zool. 55(1): 53-87.

1991.

The methodology employed in the dissec-

tion and preservation of the male terminalia, fe-

male spermathecae and other morphological

parts is the same employed by Artigas (1971).

Tribe DIOCTRIINI Hull, 1962

KEY TO GENERA:

1. Antennal basis not raised on tubercle, hidden behind eye margin in profile. Second flagellomere

short and narrow, one-fifth as long as first flagellomere, subtruncate or cup-shaped ...........

de VE Nannodioctria Wilcox 8: Martin, 1942

Antennal basis not raised on tubercle visible in profile. Second flagellomere long, subequal in

width to first flagellomere, one-third to one-half as long as first flagellomere, more or less

board-shaped. Spermathecae as in figs. LL .ooinnnnininnnnnninnnnnn Dioctria Meigen, 1803

Genus Nannodioctria Wilcox € Martin, 1942

Dioctria, subg. Neodioctria Wilcox 8£ Martin, 1941: 7 (preocc. Ricardo, 1912). Type-species,

albicornis Wilcox £ Martin (orig. des.).

Dioctria, subg. Nannodioctria Wilcox 8: Martin, 1942: 35 (nom. nov. for Neodioctria Wilcox $

Martin). Type-species, albicornis Wilcox € Martin (aut.).

australis (Adisoemarto £« Wood), 1975: 515 (Dioctria). Type-locality: Mexico, Chiapas, San Cristó-

bal.

Tribe ECHTHODOPINI Adisoemarto € Wood, 1975

KEY TO GENERA:

1. Upper half of face and frons prominently swollen, bearing the antennae and a brush of abun-

dant long hairs below their base, these hairs extending ventrally along lateral margins of

face. SpermathecaciasamEles. dd Led Dicolonus Loew, 1866.

Swelling at antennal base less wellmarked or nearly absent; upper part of face either bare or

with only a single row of hairs along eye margin (except Metadioctria, with a group of

hair below antenna a A qee eo oca eee 2

2(1). Upper part of face bare. Abdominal tergite 2 with a groove about one-third to one- fourth

apart from base of segment, groove extending laterally, separating a shiny crescent-

shaped'area ontheirstithiidotis sec A 5)

262

Am. Asilidae, Stenopogoninae: Dioctriini « Echthodopini: ARTIGAS, J.N. € N. PAPAVERO

Upper part of face with a few weak hairs besides eye and occasionally with a few under

antennal bases. Abdominal tergite 2 without a groove, or with the groove close to

the proximal margin and not separating off a crescent-shaped area c.ococncnninicnincn...

3(2). Scutellar margin with moderately long erect hairs, as long as scutellum, disc of scutellum

with appressed short hairs. Anepisternum covered with recumbent hairs. Sper-

MAMNECRO ESOS NÓ oro eo Echthodopa Loew, 1866

Scutellar margin without long hairs, disc of scutellum bare or at most with minute hairs.

Anepisternum pilose on upper one-third and along posterior margin. Spermathecae

O A Eudioctria Wilcox € Martin, 1941

4(2). Abdominal tergites strongly arched dorsally, rounded, in cross sections, making abdomen

chrysidid-like. Scutum bare, or with sparse minute hairs. Scutellar margin with very

short appressed hairs. Frons and OCciput pruinose ....cocciccno.... Bohartia Hull, 1958

Abdominal tergites flattened dorsally. Scutum and scutellar margin with long fine hair.

Frons and occiput shining black ..................... Metadioctria Wilcox 8: Martin, 1941.

Genus BOHARTIA Hull, 1958 of Dioctria and six related genera (Diptera, Asilidae).

Quest. ent. 11: S0S-576, 139 figs.

Bohartia Hull, 1958: 317. Type-species, bromleyi

ARTIGAS, J.N. 1971. Las estructuras quitinizadas de la sper-

matheca y funda del pene de los asílidos y su valor sis-

Hull (orig. des.). temático a través del estudio por taxonomía numéri-

ca. Gayana (Zool.) 18: 1-106, 138 figs.

senecta Adisoemarto £ Wood, 1975: 532. Type- HuLL, F.M., 1958, New genera of robber flies (Diptera,

locality: Mexico, Baja California, Colonia Asilidae). Revía. bras. Biol. 18: 317-324.

Guerrero. Meigen in North America (Diptera-Asilidae). Ento-

mologica americana 21: 1-22.

REFERENCES WiLcox, J. £ C. H. MARTIN, 1942. Nannodioctria n. n. for

Neodioctria Wilcox £ Martin (nec Ricardo). Bull.

ADISOEMARTO, S. £ D.M. Wood, 1975. The Nearctic species Brooklyn ent. Soc. 37: 35.

263

WIiLCOX, J. € C. H. MARTIN. 1941, The genus Dioctria

Gayana Zool. 55(4), 1991

0.5

FIGURAS 1-2. Dioctria atricapilla Meigen. 1. situation of the spermathecae in the abdomen. 2. spermarhecae. Scale in mm.

264

Am. Asilidae, Stenopogoninae: Dioctriini € Echthodopini: ARTIGAS, J.N. € N. PAPAVERO

FIGURAS 3-4. Dicolonus simplex Loew. 3, situation of the spermathecae in the abdomen. 4, spermathecae. Scales in mm.

265

Gayana Zool. 55(4), 1991

FIGURAS 5-6. Echthodopa pubera Loew. 5, situation of the spermathecae in the abdomen. 6, spermathecae. Scales in mm.

FIGURAS 7-8. Eudioctria media Banks. 7, situation of the spermathecae in the abdomen. 8, spermathecae. Scales in mm.

266

Gayana Zool. 55(4): 267-303, 1991

ISSN 0016-531X

TRICHOPTERYGINI NEOTROPICALES Il (LEPIDOPTERA:

GEOMETRIDAE): EL COMPLEJO RHOPALODES Guenée, 1857*

NEOTROPICAL TRICHOPTER YGINI ll (LEPIDOPTERA:

GEOMETRIDAE): THE COMPLEX RHOPALODES Guenée, 1857

Luis E. Parra* y Claudia P. Santos-Salas*

RESUMEN

Se entrega una revisión del complejo de géneros Rhopalodes

Guenée, 1857. Rhopalodes, Tomopteryx y Triptila son rede-

finidos y redescritos y Triptiloides es descrito como género

nuevo. Las siguientes nuevas combinaciones y especies son

propuestas: Triptila ibarrai n. sp., T. septentrionalis n. Sp.,

Triptiloides esmeralda (Bartlett-Calvert) n. comb., T. fissa

(Felder £ Rogenhofer) n. comb., 7. krahmeri n. sp. y T. laeta

(Philippi) n. comb. Rhopalodes argentina Berg, y R. castniata

Guenée, Tomopteryx amoena Philippi, y Triptila virescens

(Philippi) son redescritos en base a los caracteres externos y

de la genitalia. Se entregan la distribución geográfica y el pe-

ríodo de vuelo de las especies tratadas. Se dan a conocer cla-

ves para la identificación de los géneros y especies, las cuales

se basan en: maculación alar, genitalia del macho y hembra.

Se ilustran los caracteres externos y de la genitalia.

PALABRAS CLAVES: Lepidoptera, Geometridae, Trichopterygi-

ni, complejo Rhopalodes, Sistemática, Neotrópico.

INTRODUCCION

Guenée en 1857 describe por primera vez al gé-

nero Rhopalodes, con la especie: R. castniata,

sobre la base de una hembra colectada en Brasil;

*Trabajo financiado por el Proyecto 20.38.14, de la

Dirección de Investigación de la Universidad de Concepción.

**Depto. de Zoología, Universidad de Concepción,

casilla 2407-10, Concepción, Chile.

ABSTRACT

The revision of the genera complex Rhopalodes Guente,

1857 are given. Rhopalodes, Tomopteryx and Triptila are

redefined and redescribed. Triptiloides is described as a new

genus. Triptila ibarrai nm. sp., T. septentrionalis M. Sp.;

Triptiloides esmeralda (BartlettCalvert) n. comb., T. fissa

(Felder £« Rogenhofer) n. comb., T. krahmeri n. sp., T. laeta

(Philippi) n. comb. are proposed. Rhopalodes argentina Berg

and R. castniata Guenée, Tomopteryx amoena Philippi, and

Triptila virescens (Philippi) are redescribed, based on the

external features and the genitalia.

The geographical distribution and the time of flight of the

species are given. Identifications keys for the'genera and

species are given, based mainly on: wing pattern, male and

female genitalia. The external features and of the genitalia

are illustrated.

KEYWORDS: Lepidoptera, Geometridae, Trichopterygini,

Rhopalodes complex, Systematic, Neotropical.

caracteriza al género por la forma que tienen las

antenas, las cuales asemejan mucho a los hespéri-

dos. Posteriormente Berg (1883 y 1885) describe

para Argentina dos especies dentro de este géne-

ro (R. argentina y R. mucosaria). Prout (1910)

indica muevamente estas dos especies para

Argentina y además describe una nueva (R.

otophora), señalando que es una especie muy

cercana a los géneros chilenos.

Philippi (1873) describe al género Tomop-

teryx para Chile con tres especies (T. amoena, T.

laeta y T. virescens) y lo caracteriza por tener las

alas posteriores bilobuladas. Butler (1882) (fide

267

Gayana Zool. 55(4), 1991

Bartlett-Calvert, 1894) indica en su catálogo a

Tomopteryx virescens Philippi, como especie in-

tegrada al género Rhopalodes. Warren (1894)

crea el género Triptila para la especie T. virescens

de Philippi, caracterizándolo por la presencia de

un gran lóbulo sobrepuesto en las alas poste-

riores. Señala además que este género se distin-

gue de Rhopalodes por la presencia de una vena

radial en las alas posteriores, y de Tomopteryx

Philippi, por la ausencia de una hendidura en las

alas posteriores. Según Fletcher (1979) los tres gé-

neros mencionados anteriormente serían válidos.

Al parecer este conjunto de géneros forma-

rían un complejo dadas las interrelaciones men-

cionadas, por ello se ha decidido resolver este

problema taxonómico de acuerdo a los siguientes

objetivos:

a) Establecer el status taxonómico de cada gé-

nero y de las especies que se les han asignado

y/o que estén relacionadas.

b) Contribuir al conocimiento de la distribución

de los taxa en la región Neotropical.

c) Construir claves para separar los taxa, basa-

das en la maculación alar y en la terminalia

del macho y de la hembra cuando correspon-

da.

MATERIALES Y METODOS

Los ejemplares utilizados en el presente estudio

provienen de diferentes museos, colecciones pri-

vadas y de recolección en terreno. Las institu-

ciones y personas que facilitaron material ento-

mológico son: Museo Nacional de Historia Natu-

ral, Santiago, Chile (MNHN); Museo de Zoolo-

gía de la Universidad de Concepción, Concep-

ción, Chile (MZUC); British Museum (Natural

History) Londres, Inglaterra (BMNH); Mustum

National d'Histoire Naturelle, Paris, Francia

(MNHNP); Museo Bernardino Rivadavia, La

Plata, Argentina (MBR) y el Sr. Ernesto Krah-

mer, Valdivia, Chile (CK).

La recolección en terreno fue escasa y ca-

sual y se desarrolló principalmente entre la VIII y

X regiones de Chile.

268

Para el análisis taxonómico y morfológico se

usaron las técnicas corrientes como son los análi-

sis de la morfología externa (maculación alar, es-

polones en la tibia, etc.) y de la genitalia del

macho y de la hembra cuando ambos están pre-

sentes. Los dibujos fueron realizados bajo una cá-

mara clara ABBE, Carl Zeiss, colocada en una lu-

pa esteroscópica.

La distribución y período de vuelo de cada

especie en particular es señalada en base a los da-

tos obtenidos directamente de la etiqueta de co-

lecta de cada ejemplar.

RESULTADOS

DIAGNOSIS PARA EL COMPLEJO DE GÉNEROS RHOPALODES 5. /

Los géneros y especies del complejo Rhopalodes

s.l. poseen las alas anteriores amplias y poste-

riores —en el macho— reducidas; éstas últimas

llevan uno, dos o tres lóbulos en el área anal, los

que van sobrepuestos sobre las mismas. A veces

el margen externo está dividido; antenas gruesas

del tipo ropaliforme; palpos labiales porrectos;

ocelos ausentes; chaetosemata presente; tibias

posteriores con dos pares de espolones, en el

macho con un pincel de pelos y con un mechón

de escamas en el ápice del fémur, en su superficie

interna. Hembra con las alas posteriores

normales, tibia y fémur sin pincel de pelos ni

mechón de escamas. Alas anteriores con dos

areolas; posteriores generalmente con dos venas

anales en el lóbulo, venas Sc y Rs unidas por una

pequeña vena transversal, algunas veces la vena

My y Cu, pueden estar fusionadas. La genitalia

del macho tiene las valvas con una hendidura en

el ápice (región del cucullus); uncus simple o

altamente modificado, vesica armada con espinas

O procesos odontoides o desnuda. Hembra

generalmente con un esclerite posterior al

esterigma, que corresponde al noveno esternite

abdominal; bursa copularix bien desarrollada y

globosa, elíptica u ovoide o poco desarrollada y

reducida.

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

CLAVE PARA SEPARAR LOS GENEROS DEL COMPLEJO DE GENEROS RHOPALODES BASADA EN CA-

RACTERES MORFOLÓGICOS EXTERNOS Y EN LA GENITALIA DEL MACHO.

1. Alas posteriores con un lóbulo y con una hendidura entre la vena Cu, y Mr 2

o A OOO >)

2(1). Valvas con una hendidura profunda en el margen ventral ............. Tomopteryx Philippi.

2”. Valvas con una hendidura pequeña en el ápice MediO ...ooconccicnn.cci.... Triptiloides n. gen.

3(1). Alas posteriores con dos lóbulos, aedeagus curvo e inerme; último segmento abdominal

con cerdas apicales en el borde terminal del lado ventral ...................... Triptila Warren

3”. Alas posteriores con tres lóbulos; aedeagus con un proceso ancoriforme; vesica armada;

último segmento abdominal sin cerdas apicales ..................... Rhopalodes Guenée, 1857.

Rhopalodes Guenée, 1857

Rhopalodes Guenée, 1857, pp. 360-361.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Rhopalodes castniata Guenée, 1857.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL:

“Antenas de la hembra sin cilias, gruesa desde la

base hacia el ápice, con el extremo agudo. Frente

plana. Palpos filiformes, rectos conniventes y

cruzados en el ápice. Espiritrompa bien de-

sarrollada. Tibias posteriores con no más que un

par de espolones. Alas enteras; las anteriores

grandes, con el ápice prolongado, con líneas dis-

tintas; las posteriores la mitad más pequeñas que

las anteriores, el ángulo interno redondeado. Dos

areolas. Primera aislada; segunda, más tercera y

3” parten del ápice de la areola. La costa de las

alas posteriores resueltamente bífida. Dos y tres

cortas y pedunculadas” (Guenée, 1857; traducido

del francés).

REDESCRIPCIÓN:

DIAGNOSIS

El género se distingue porque tiene las antenas

del macho y de la hembra muy similares a la de

los Hesperiidae, es decir, muy engrosadas en casi

toda su longitud y terminadas en un ápice muy

agudo.

RECONOCIMIENTO

Cabeza sin ocelos; chaetosemata presente; ante-

nas del tipo hesperiformes. Alas anteriores

anchas, manchadas con colores castaño y ama-

rillo. Alas posteriores pequeñas, las venas Rs y

Mi libres, pero muy próximas en su base; venas

M3 y Cu; fusionadas en el macho como en la

hembra; macho con tres lóbulos: uno anal y dos

cubitales (fig. 4).

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA

Brasil y Argentina (Corrientes).

ETIMOLOGÍA

El nombre del género está relacionado al pareci-

do que tiene la antena con las mariposas conoci-

das antiguamente bajo el nombre de Rhopaloce-

ra (Rhopalo = maza = Rhopalocera; odes

(eidos) = semejanza, imagen).

Rhopalodes argentina Berg, 1883

(Figs. 1-4 y 52)

Rhopalodes argentina Berg, 1883, pp. 164-165.

Rhopalodes argentina Berg, Prout, 1910, p. 240.

TIPO:

Holotipo. Macho, Corrientes, diciembre

1876. Depositado en el Museo Argentino

Gayana Zool. 55(4), 1991

de Ciencias Naturales “Bernardino Rivada-

via”, Buenos Aires, Argentina (MBR)

(vide).

DESCRIPCIÓN ORIGINAL

“Pelos negros, amarillo-lúteo; artículo mediano

del palpo por debajo negro-fusco, el ápice de las

antenas es manchado y acuminado; región exter-

na de las alas anteriores salpicadas de negro, área

basal desde el limbo con muchas líneas onduladas

blancas y el área media con 6 líneas onduladas

adornadas de negro. Mancha discoidal negra an-

gosta, con dos puntos submarginales en la celda,

4tas y 5'12 con puntos marginales negros, cilias

blancas; alas posteriores blancas, lóbulos superior

medio ancho; cara inferior del ala estramínea,

borde anterior del área media, sobre todo hacia el

ápice, diluido fuscoso. Tórax y abdomen testá-

ceo; patas amarillentas, fémures anteriores lú-

teos, tibias y tarsos anteriores y medios —no los

tarsos posteriores— por arriba negros manchados

y con un vello subanillado”. (Berg, 1883; traduci-

do del latín).

FiGs. 1-4.Genitalia y venación alar del macho de Rhopalodes argentina Berg; Fig. 1 genitalia en vista ventral, Fig. 2 aede-

agus en vista lateral, Fig. 3 proceso ancoriforme del aedeagus en vista dorsal y Fig. 4 venación de las alas anterior y poste-

rior. anc: proceso ancoriforme; cv: costa valvar; ds: ductus seminalis; fae: funda del aedeagus; sa: saccus; SO: sOCius; ve: vesi-

ca; yux: yuxta; Sc, Rs, M, y My +Cu;: venas alares.

270

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

REDESCRIPCIÓN:

TAGMA CEFÁLICO (fig. 52): Frente, vertex y superfi-

cie dorsal de las antenas cubiertos por escamas

amarillentas; antenas engrosadas en toda su lon-

gitud para terminar en un ápice estrecho y agu-

do, superficie ventral ciliada; ocelos ausentes;

chaetosemata presente. Palpos labiales porrectos,

segmento 1 cubierto por escamas blanco-

amarillentas, segmento 2 castaño oscuro y .seg-

mento 3 claro; el segmento 2 es cuatro veces ma-

yor en longitud al segmento 3, el cual es pequeño

y globoso.

Tacma TorAcIcO (fig. 52): Patagias, tégulas y super-

ficie dorsal del tórax cubierto por escamas blan-

cas y amarillas. Superficie ventral cremosa. Patas

metatorácicas con dos pares de espolones en la ti-

bia; uno medial y otro apical, en ambos el espo-

lón interno es dos veces más largo que el externo.

Las patas en su superficie externa son cremas en

el femur y con bandas castaño oscuras en la tibia

y tarsos; la superficie interna es de color crema.

PATRÓN DE COLOR DELAS ALAS ANTERIORES (fig. 52): Color

general representado por una tonalidad ama-

rillenta, en ésta destacan la región entre las ban-

das antemedial y postmedial por su color castaño

oscuro y gris. La mancha discal es alargada, de

color castaño oscuro y está dispuesta en una

franja gris que baja desde la costa para llegar al

margen interno. Las bandas postmedial y ante-

medial representadas por líneas compuestas por

escamas castaño oscuro y precedidas o termina-

das por líneas de escamas blancas que represen-

tan en el lado externo a la banda subterminal.

Banda adterminal blanca; banda terminal repre-

sentada por puntos castaño oscuros, pareados y

alternados por escamas amarillentas, y desde la

vena M2 hacia el ápice lleva manchas castaño os-

curas de mayor tamaño y que limitan en su borde

interno con la banda adterminal. Superficie

ventral castaño claro amarillenta con dos re-

giones distinguibles por su color más oscuro: re-

gión entre las bandas ante y postmedial y el mar-

gen externo constituido por una franja castaño

clara, en donde destaca la banda adterminal de

color blanco.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 52): Su-

perficie dorsal y ventral blancas a cremas. El ló-

bulo es similar en coloración y los dos lóbulos di-

271

gitiformes llevan en su ápice abundantes escamas

piliformes de color castaño claro o rojizo.

TAGMA ABDOMINAL: Similar en coloración al tórax.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 1-3): Uncus rectangular

plano, con el extremo posterior trilobulado, cor-

to, 6 veces más pequeño que la longitud valvar,

socius presente a modo de una hinchazón leve en

la base del uncus; gnathos ausente; valvas dos ve-

ces más largas que anchas, región costal escleroti-

zada y con un cojín cubierto de microespinas en

su región central; sacculus normal; yuxta con el

borde anterior recto, la región posterior bilobula-

da, cada lóbulo terminado en una punta aguda;

con dos brazos laterales cubiertos de microespi-

nas en su región media; saccus subrectangular

con el borde anterior redondeado, el borde lateral

y posterior cóncavo. Aedeagus subigual al largo

de las valvas, aproximadamente 10 veces más lar-

go que ancho; ductus seminalis emerge en el ter-

cio anterior por delante del apéndice ancoriforme

que lleva la funda; en vista dorsal este apéndice

es subrectangular con una cabeza ancha en la

parte terminal, la cual lleva dos bandas curvadas

en la zona lateral; en vista lateral la cabeza es

subtriangular dirigida hacia arriba y en el vientre

lleva una prolongación triangular que no alcanza

a tocar la funda; vesica armada por cuatro piezas

adontoides cuyas cúspides están aserradas.

EXPANSIÓN ALAR DEL HOLOTIPO: 33 mm.

PERÍODO DE VUELO: Diciembre.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Corrientes (Argentina)

(27% 3S y 58% 30"W).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho (Holotipo), Corrientes, diciembre 1876 (MBR); 1

macho (Paratipo), Corrientes, diciembre 1876 (MBR).

OBSERVACIONES

Se revisaron solamente los ejemplares tipos de la

especie, dado la carencia de material de otras lo-

calidades. En general, externamente en forma

tiene un patrón muy similar al de Triptila, dife-

renciándose principalmente por la morfología de

los lóbulos de las alas posteriores como por la ar-

Gayana Zool. 55(4), 1991

madura genital, tanto a nivel de las valvas como

de la complejidad de la vesica.

Se desconoce la hembra de la especie, pero

se cree que ésta debe ser muy similar a la de la es-

pecie tipo del género.

Por la localidad de recolección, se cree que

esté muy relacionada con la especie tipo del géne-

ro, a pesar de desconocer la localidad exacta de

éste.

Rhopalodes castniata Guenée, 1857

(Figs. 5-7 y 53)

Rhopalodes castniata Guenée, 1857, p. 361, pl.

20, fig. 2.

Tipo:

Holotipo. Hembra, Brasil. Depositado en el

Muséum National d'Histoire Naturelle, Pa-

ris, Francia (MNHNP) (vide).

DESCRIPCIÓN ORIGINAL:

“Alas blancas: las superiores variadas de negro y

castaño arcilloso, con el fleco un poco entrecorta-

do con negro. Tres líneas negras, apartadas, si-

nuosas y temblorosas, casi paralelas. El espacio

central manchado de negro en el medio y de lar-

gas líneas amarillo-arcillosas. En el centro de la

celda hay una lúnula negra, cuya cavidad está gl-

rada hacia la costa. Con una mancha terminal

negra entre la 1 y la 2. Alas inferiores blancas,

con un pequeño punto celular y una sombra gris

subterminal”. (Guenée, 1857, traducido del fran-

cés).

REDESCRIPCIÓN:

Cabeza, tórax y abdomen de color castaño. Ti-

bias mesotorácicas con un par de espolones api-

cales, el espolón interno es dos veces más largo

que el externo; tibias metatorácicas con dos pares

de espolones: un par medial y otro apical, en am-

bos el espolón interno es dos veces mayor al ex-

terno.

Alas anteriores con dos areolas y con una

vena anal (A) (fig. 7). La superficie dorsal blanco

amarillento mezclada con castaño claro, en don-

de destacan por su color castaño oscuro las ban-

das basal, antemedial y medial. Banda basal

ancha hasta la región entre las venas medial y

anal y estrecha e inclinada levemente hacia

adentro hasta tocar el margen interno; banda an-

temedial estrecha, ésta se bifurca después del

tronco medial, la rama interna es estrecha y la ex-

terna es ancha y converge con la banda medial.

Mancha discal luniforme, castaño oscura, con el

lado cóncavo dirigido hacia la costa. Región del

margen externo, entre las venas R;s y M;, con

una gran mancha castaño oscura bilobulada ha-

cia la región interna (Fig. 53).

Alas posteriores, venas Rs y M; peduncula-

das por un corto trecho; venas My y Cu; pedun-

culadas, vena Cu) libre y paralela a M3+Cu;;

con una vena anal (A) (Fig. 7). Superficie dorsal

blanca con escamas castaño claro dispersas;

mancha discal suborbicular de color castaño os-

curo.

GENITALIA DE La HEMBRA (Figs. 5 y 6): Bursa copu-

latrix rectangular, alargada, superficie interna en

sus dos tercios basales cubierta por una banda de

microespinas;, ductus bursae diez veces más largo

que ancho; ductus seminalis emerge desde una

protuberancia por sobre el cestum; cestum

cuadrangular, ocupa 1/10 de la longitud del duc-

tus, colliculum delgado. Apófisis posteriores 2 ve-

ces más largas que las anteriores.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 34 mm.

PERÍODO DE vuELo: Desconocido.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Brasil.

MATERIAL EXAMINADO:

1 hembra (Holotipo), Brasil (MNHNP).

OBSERVACIONES

Para esta especie sólo se contó con el material ti-

po, las características de la hembra nos hacen su-

poner que es una especie que está muy relaciona-

da con las especies argentinas que poseen un

patrón de maculación y forma muy semejante,

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

1mm

Fics. 5-7. Genitalia y venación alar de la hembra de Rhopalodes castniata Guenée: Fig. 5 genitalia en vista ventral, Fig. 6

región terminal de la genitalia en vista dorsal y Fig. 7 venación de las alas anterior y posterior (gentileza del Dr. J. Minet).

aa: apófisis anteriores: ap: apófisis posteriores; bc: bursa copulatrix, ces: cestum; col: colliculum; ds: ductus seminalis; dub:

ductus bursae.

pero por sobre todo el hecho de que las venas My

y Cuy están fusionadas han hecho incluir esta es-

pecie junto con la anterior, dado que la venación

de la hembra parece ser muy homogénea dentro

del grupo y solamente el macho presenta algunas

modificaciones.

Tomopteryx Philippi, 1873

Tomopteryx Philippi, 1873, p. 313.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Tomopteryx amoena Philippi, 1873.

273

DESCRIPCIÓN ORIGINAL:

“Cuerpo delgado. Antenas filiformes. Palpos in-

feriores moderadamente desarrollados, obtusos,

densamente piloso-escamoso, último segmento

obtuso, moderadamente curvado hacia abajo;

fascículo superior escamoso. Alas anteriores an-

gostas, triangulares, margen anterior subrecto,

extremo poco convexo, ángulo más obtuso cuan-

do el margen posterior lo forma. Alas posteriores

más pequeñas, bilobuladas, lóbulo interno

mucho menor al externo, margen alar con flecos

tan largos como el de las alas anteriores. Patas

largas y delgadas, tibias anteriores con un par de

espolones; posteriores con dos pares de espolo-

nes; uñas pequeñísimas. (Philippi, 1873, traduci-

do del latín).

Gayana Zool. 55(4), 1991

REDESCRIPCIÓN:

DIAGNOSIS

Las alas son estrechas y largas; en la maculación

de las alas anteriores destaca el tercio más claro

que los dos tercios internos de color castaño oscu-

ro.

La vena Cu), de las alas posteriores se pro-

longa en un pequeño lóbulo. Lóbulo ancho,

subtriangular, la mitad del largo del ala, con dos

venas anales: A, en la articulación ala-lóbulo y

Ay en su interior (fig. 10).

RECONOCIMIENTO

Cabeza sin ocelos; chaetosemata presente; ante-

nas filiformes algo engrosadas en sus dos tercios

proximales; alas anteriores con los dos tercios ba-

sales oscuros y el tercio distal claro.

GENITALIA DEL MacHo: Uncus grueso, deprimido, ápi-

ce de las valvas excavado profundamente en la

región ventral, vesica del aedegus desnuda.

GENITALIA DE La HEMBRa: Bursa copulatrix ovoide y

membranosa.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA

El género tiene la distribución de la única especie

que le pertenece.

ETIMOLOGÍA

Nombre griego latinizado que indica alas en par-

tes o divididas (se refiere a las alas posteriores) (to-

mo = división; peteryx = alas).

Tomopteryx amoena Philippi, 1873

(Figs. 8-13 y 54-55)

Tomopteryx amoena Philippi, 1873, 34:313, pl

2,Fig. 5.

Alsophila ternata Felder £ Rogenhofer, 1875,

5(2):pl. 132, fig. 28.

274

Tipo:

Holotipo extraviado. Neotipo. Macho, Chi-

le, 6035.

Depositado en el Museo Nacional de Histo-

ria Natural, Santiago, Chile (MNHN).

DESCRIPCIÓN ORIGINAL

“Cabeza y tórax gris-verdoso; abdomen albo; dor-

so de las alas anteriores gris-verdosas y varios

puntos oscuros, líneas con manchas oscuras, líne-

as paralelas negras formando fascículos irregula-

res, vientre de las alas ceniciento y submaculado;

alas posteriores en el dorso albas versus el mar-

gen, más oscuro, vientre de las alas ceniciento; ló-

bulo posterior interno alargado y delgado”

(Phlippi, 1873; traducido del latín).

“Las antenas son tan largas como el cuerpo,

en forma de hilo y terminan en una punta fina en

el ápice. Las escamas del cuerpo (tórax) se alar-

gan hacia atrás formando un manojo. Las alas

anteriores son de colores lindos, el color base es

suave tendiendo a un gris-verdoso, al centro lle-

van una mancha castaño-rojiza con borde más

suave, por esta razón se ve un punto castaño, con

manchas nubosas y líneas onduladas. En el borde

externo hay una línea negra dentada e interrum-

pida; a dos tercios del borde anterior se nota una

especie de amarra diagonal que está constituida

por tres finas líneas negras onduladas, y que ha-

cia atrás se pierden lentamente; hacia el exterior

está bordeada por una línea ondulada blanqueci-

na que lentamente se pierde.

Líneas negras onduladas se ven en la base

del ala y al centro, en el lado externo gris. Super-

ficie ventral, las líneas se ven en el borde delante-

ro que llega a ser castaño, además de unos puntos

oscuros en el resto del ala.

Las alas traseras con los flecos más largos

que las alas anteriores.

Las tibias tienen una línea negra y tarsos son

blancos anillados con negro” (Philippi, 1873; tra-

ducido del alemán).

REDESCRIPCIÓN:

Tagma cefálico (fig. 54): Frente y vertex cubier-

tos por escamas cremas y castaño claro, ocelos

ausentes, chaetosemata presente; antenas gruesas

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

Fis. 8-10. Genitalia y venación alar del macho de Tomopteryx amoena Philippi: Fig. 8 genitalia en vista ventral. Fig. 9

aedeagus en vista lateral y Fig. 10 venación de las alas anterior y posterior. Sc, Rs, M;, Cu, y Ay: venas alares.

con el ápice terminado en punta, la base es simi-

lar en color al vertex, su superficie dorsal está cu-

bierta por escamas castaño y en el vientre se en-

cuentra ciliada. Palpas labiales porrectos dirigi-

dos hacia adelante, están cubiertos por escamas

castaño oscuras, el segmento 2 es 4 veces más lar-

go que el segmento 3 y 3 veces el segmento 1; to-

dos los segmentos llevan escamas periféricas que

se distribuyen en forma subperpendicular al eje

de los segmentos.

TAGMA TORÁCICO (fig. 54): Patagias, tégulas y prono-

to cubiertos de escamas cremas y castaño claras.

Mesoscutum y mesoscutellum con escamas cas-

taño oscuras; metascutum cubierto en casi toda

su superficie por dos mechones de escamas casta-

ño grisáceas;, metascutellum con escamas castaño

oscuras. Superficie ventral cubierta por escamas

piliformes de color crema. Superficie de las patas

anilladas con bandas castaño grisáceas a oscuras

275

alternadas con crema. Tibias medias con un par

de espolones apicales, el interno es dos veces más

largo que el externo. Fémur metatorácico con un

mechón de pelos en el extremo apical de la cara

interna; tibia con un pincel de pelos y dos pares

de espolones: un par medial y otro apical, en am-

bos el espolón interno es 2 veces mayor al exter-

no.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 54): Su-

perficie dorsal castaño-ceniciento. Desde la base

hasta la banda posterminal de un color castaño

más oscuro que el de esta banda, llegando hasta

el margen externo. Dentro del área más oscura,

las bandas, medial y posterminal son notorias de-

bido a que sus márgenes llevan líneas castaño os-

curas; además, entre estas dos bandas y en la re-

gión costal hay una mancha subclaviforme limi-

tada por escamas castaño oscuras, siendo similar

al color de la región externa del ala. Región basal,

Gayana Zool. 55(4), 1991

en el borde interno lleva una banda castaño roji-

za en diagonal que está limitada en su región su-

perior por una línea castaño oscura ondulada.

Región apical, con una línea negra en diagonal

que se dirige hacia el interior del ala. Superficie

ventral ceniciento a dorado, con el área externa

más clara después de la banda postmedial.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 54): Su-

perficie dorsal y ventral blanco ceniciento, tor-

nándose castaño claro hacia la región externa del

ala. Lóbulo similar al patrón general, pero un po-

co más claro.

TaGMA ABDOMINAL (fig. 54): Café ceniciento en la su-

perficie dorsal, vientre más claro. Pigidio con es-

camas piliformes similares al resto del abdomen.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 8 y 9): Uncus grueso,

deprimido, terminado en punta 3 veces más pe-

queño que las valvas; gnathos ausente; socius

ausente; valvas 3 veces más largas que anchas,

ápice excavado profundamente en la región

ventral; sacculus normal; yuxta subcuadrangu-

lar, saccus subcuadrangular. Aedeagus subigual

al largo de las valvas, 10 veces más largo que

ancho; ductus seminalis emerge de la región su-

banterior de la funda; vesica desnuda.

EXPANSIÓN ALAR DEL NEOTIPO: 32 Mm.

DESCRIPCIÓN DE LA HEMBRA (fig. 55): Similar al macho

en todo sus caracteres, pero difiere en que las alas

posteriores no llevan lóbulo y poseen una sola ve-

na anal (A)) (fig. 13); fémur posterior no lleva un

mechón de pelos. El patrón de color de las alas

tiene un tinte verdoso sobre el que se destacan las

mismas manchas observadas en el macho, ade-

más de una mancha triangular en la base y en la

región costal, que llega hasta el tronco radial.

GENITALIA DE La HEMBRA (figs. 11 y 12): Bursa copu-

latrix ovoide, membranosa; ductus bursae la mi-

tad de la longitud de la bursa, 4 veces más largo

que ancho; cestum ocupa 1/3 de la longitud del

ductus, colliculum membranoso. Apófisis poste-

riores 1,25 veces más largas que las anteriores.

Filas. 11-13. Genitalia y venación alar de la hembra de Tomopteryx amoena Philippi: Figs. 11 y 12 genitalia en vista

ventral y lateral respectivamente y Fig. 13 venación de las alas anterior y posterior.

276

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

EXPANSIÓN ALAR DE LA HEMBRA: 31 mm.

PERÍODO DE VUELO: 20 de septiembre al 16 de febre-

ro.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Concepción (36% 50'S) a

Valdivia (39% 48'S).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho, Chile 6035 (MNHN); 1 macho, Col. Paulsen, Chi-

le, 6036 (MNHN); 1 macho (Neotipo), 105, 5417 (MNHN); 1

macho, SIN DATOS (MNHN); 1 macho, 105, Princi., II 88

(MN HN); 1 hembra, Concepción, 20-1X-60, Trampa: Coll.

(MZUC); 1 hembra, Chile, 5418 (MNHN); 1 hembra, Prov.

Valdivia, Vald., CHILE, 16-2-60, E. Krahmer (CK).

OBSERVACIONES

Esta especie es muy similar externamente a las

especies del género Pachrophylla y Para-

pachrophylla (Parra, 1991) pero a diferencia de

éstas la genitalia es notablemente diferente, des-

tacando principalmente la forma del uncus y la

posición de la hendidura en el ápice de las valvas.

Otra característica que la hace diferente es el

patrón de maculación, éste dice relación con la

diferencia de color entre los dos tercios basales y

el tercio proximal del ala anterior.

La especie tiene una distribución que coinci-

de con la zona higromórfica de Chile, principal-

mente la Selva Valdiviana.

Triptila Warren, 1894.

Triptila Warren, 1894, p. 398.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO:

Tomopteryx virescens Philippi, 1873.

DESCRIPCIÓN ORIGINAL:

“Se distingue de Rhopalodes Guenée por la pre-

sencia de una vena radial en las alas posteriores,

de lo cual Guenée expresa que dicho estado está

ausente en Rhopalodes, se distingue de Tomop-

teryx Philippi por la ausencia de una hendidura

27,

en las alas posteriores; se caracteriza por la pre-

sencia de un lóbulo muy grande sobrepuesto

sobre las alas posteriores” (Warren, 1894; tradu-

cido del inglés).

REDESCRIPCIÓN:

DIAGNOSIS

Estas polillas tienen las alas anteriores grandes en

contraposición al tamaño de las posteriores (pe-

queñas), generalmente son animales de alas ver-

des o colores castaños. Las alas posteriores llevan

los lóbulos en el margen interno.

RECONOCIMIENTO

Con dos lóbulos en las alas posteriores, uno en la

región anal y otro en la zona de las venas cubita-

les. El lóbulo anal lleva dos venas: (A; , > y Ay) y

el lóbulo de la región cubital lleva dos venas, Cu;

y Cu, unidas por una vena transversal, ambas di-

vergen en la zona media del lóbulo para luego

converger sin tocarse hacia el margen libre del ló-

bulo. De la rama A¡ +A) divergen en su tercio

apical, A, dirigida hacia arriba y luego curvándo-

se hacia abajo para ingresar al lóbulo cubital y A,

es un pequeño pedúnculo que sigue el sentido de

A¡+A, (figs. 18 y 24).

GENITALIA DEL MacHo: Uncus delgado y pequeño,,

valvas grandes y anchas, con una hendidura api-

cal pequeña. El aedeagus está curvado ventral-

mente y la vesica es inerme.

GENITALIA DE LA HEMBRA: La armadura genital de la

hembra destaca por tener la bursa copulatrix re-

ducida, siendo similar en diámetro al ductus bur-

sae; el ductus está fuertemente esclerotizado y la

bursa es membranosa.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA

Desde la Quinta a la Undécima Región de Chile

(desde Quillota hasta Coyhaique).

ETIMOLOGÍA

El nombre del género está ligado a la forma de las

alas posteriores, que presentan tres partes (tri =

tres; ptila: ala).

Gayana Zool. 55(4), 1991

CLAVE BASADA EN LA MACULACION ALAR PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO TR/PTILA.

] Alas anteriores abigarradasS ...............

2(1) Alas anteriores con colores castaño'a rojizos

. Triptila ibarrai n. sp.

nda Triptila septentrionalis n. sp.

2” Alas anteriores con colores verdes y amarillos ......................... Triptila virescens (Philippi)

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO TR/PTILA BASADA EN LA GENITALIA DEL

MACHO”

l Yuxta subcuadrangular .ooccncnnnnn....

] TUXIA SUDLUDUÍAL oie

2(1) Aedeagus 1,5 veces más largo que las valvas

2” Aedeagus subigual en tamaño a las valvas

A A Triptila virescens (Philippi)

La sate ne dai bed Triptila ibarrai n. sp.

AIR Triptila septentrionalis n. sp.

* Para las hembras no se hizo clave, pues solamente son dos las especies en que se les conoce: 7. septentrionalis n. sp. y T.

virescens (Philippi).

Triptila ibarrai n. sp.

(Figs. 14-15 y 56)

Tipo

Holotipo. Macho, Icalma, 22 enero 1990,

Col. H. Ibarra (MZUC).

DESCRIPCIÓN

TAGMA CEFÁALICO (fig. 56): Frente y vertex cubiertos

por escamas gris oscuras; antenas engrosadas, pe-

ro el ápice es estrecho y agudo; superficie dorsal

gris-oscuro, superficie ventral cubierta de pe-

queñas cilias; ocelos ausentes, chaetosemata pre-

sente. Palpos labiales cubiertos por escamas gris-

oscuras, el segmento 2 es cuatro veces mayor al

tercer y primer segmento respectivamente.

TAGMA TORÁCICO (fig. 56): Patagias y tégulas cubier-

tas por escamas gris-oscuras y claras al igual que

el resto de la superficie dorsal del tórax. Superfi-

cie ventral con escamas pilosas de color crema.

Todas las patas son gris oscuras y claras en su su-

perficie externa y en la región interna de color

crema. Las tibias mesotorácicas llevan un par de

espolones apicales, en donde el interno es dos ve-

ces mayor al externo. Fémur metatorácico con

un mechón de escamas en el ápice distal interno;

tibias con dos pares de espolones: uno medial y

otro apical, en ambos el interno es dos veces ma-

yor al externo.

278

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 56): Su-

perficie dorsal y ventral gris oscura. En la superfi-

cie dorsal destaca la banda basal por su color

negro y la banda subterminal por su color más os-

curo, ésta —entre las venas anal y Cu,— finaliza

con bandas transversales cortas de color negro.

Banda adterminal fina, levemente marcada por

su color gris claro.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 56): Su-

perficie dorsal y ventral blanca, tornándose leve-

mente gris hacia el margen externo. Lóbulo blan-

co.

TAGMA ABDOMINAL: Superficie dorsal gris, superficie

ventral de color claro, el último segmento lleva

en su borde posterior y ventral una fila de espi-

nas.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 14 y 15): Uncus corto,

delgado de ápice agudo, sólo alcanza la mitad de

la longitud valvar; socius y gnathos ausentes; val-

vas 4 veces más largas que su ancho máximo, en

la región apical (región del cucullus) con una hen-

didura relativamente profunda; sacculus normal;

yuxta cuadrangular con dos brazos laterales y

dos centrales rectangulares; saccus semicircular

con dos ramas laterales gruesas y con una proyec-

ción triangular hacia la región posterior por sobre

la yuxta; vinculum, poco desarrollado. Aedeagus

1,5 veces más largo que las valvas, borde ventral

cóncavo, con el extremo anterior y posterior cur-

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

1mm

FiGs. 14-15. Genitalia del macho de Triptila ibarrai n. sp.: Fig. 14 genitalia en vista ventral y Fig. 15 aedagus en vista late-

ral.

vados casi en ángulo recto, de éstos el extremo

posterior es subespatulado, pero de ápice trunco,

15 veces más largo que ancho; ductus seminalis

emerge del tercio anterior; vesica desnuda.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 30 mm.

PERÍODO DE VUELO: Enero.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Icalma (Prov. Malleco)

(38% 49'S y 71% 17W).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho (Holotipo), Icalma, 22 enero 1990, Col. H. Ibarra

(MZUC).

OBSERVACIONES:

Esta especie se diferencia de las otras dos del gé-

nero por su color más oscuro (tendencia al negro)

sobre las alas anteriores, además sus alas son más

estrechas del tipo Tomopteryx y Pachrophylla.

La especie probablemente se encuentra

distribuida en la zona del bosque valdiviano sep-

tentrional.

279

ETIMOLOGÍA

Dedicamos esta especie a un colega gran recolec-

tor de material, Lic. Héctor Ibarra V.

Triptila septentrionalis n. sp.

(Figs. 16-21 y 57-58)

Holotipo: Macho. El Canelo, 19 febrero

1933, Coll. Ureta, 5820. Depositado en el

Museo Nacional de Historia Natural, San-

tiago, Chile (MNHN).

Alotipo: Hembra. El Canelo, 16 febrero

1933, Coll. Ureta, 5822. Depositado en el

Museo Nacional de Historia Nacional, San-

tiago, Chile (MNHN).

DESCRIPCIÓN DEL HOLOTIPO:

TAGMA CEFÁLICO (fig. 57): Frente con escamas blan-

cas, cremas y castaño; antenas simples, ensancha-

das en su región apical para luego aguzarse hacia

la región distal del ápice, profusamente ciliada en

su región ventral, cilias cortas, segmento basal

Gayana Zool. 55(4), 1991

con escamas castaño-rojizas, grises y cremas, es-

camas de la región dorsal castaño oscuras entre-

mezcladas con cremas; chaetosemata presente;

ocelos ausentes; ojos glabros; palpos labiales

diagonalmente dirigidos hacia arriba con las esca-

mas castaño oscuras y cremas entremezcladas,

dispuestas radialmente al eje de los segmentos,

segmentos 1 y 2 subiguales en longitud, 4 veces

mayor al segmento 3, el cual es globoso.

Tacma TorácICO (fig. 57): Patagias con escamas cre-

mas y castaño claras en su región interna y

central, hacia el margen externo con escamas cas-

taño oscuras; tégulas con escamas cremas y Casta

ño claras, hacia la región posterior lleva escamas

piliformes dispersas de color crema; mesoscotum,

mesoscutellum, metascutum y metascutellum

con escamas castaño claras y cremas entre-

mezcladas, con un penacho de escamas de este

mismo color en las siguientes regiones: margen

anterior del mesoscutum, región media del me-

soscutum (penacho corto rodeado en su base por

escamas negras) y un par de penachos densamen-

te escamosos repartidos a ambos lados del metas-

cutum. Ventralmente el tórax está cubierto por

escamas piliformes de color crema. Patas mesoto-

rácicas con la tibia subigual en tamaño al fémur;

tibia con un par de espolones, el espolón interno

es 2 veces más largo que el externo. Tibias de las

patas posteriores 2 veces más largas que el fémur,

a la altura de sus 2/3 de longitud y en el extremo

basal lleva dos pares de espolones, en los cuales el

externo es un 65% del interno. Patas posteriores

con un mechón de escamas piliformes que nacen

del fémur y de la articulación fémur-tibia, este

mechón es corto y alcanza una longitud un poco

mayor al ancho del fémur, tibias con un pincel de

pelos.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 57): En la

superficie dorsal con un color de fondo castaño

claro rojizo, en donde aparecen bien marcadas

las bandas antemedial, postmedial y subterminal

por su color amarillo ceniciento. Mancha discal

pequeña, débilmente gris rodeada por una zona

más clara amarillo-cenicienta de forma subtrian-

gular, la cual se prolonga como una banda mono-

liforme hacia el margen interno y costal del ala.

La banda postmedial está limitada por su borde

interno, en su tercio anterior y posterior, por es-

camas castaño-rojizas; de ella emergen dos líneas

de escamas castaño-rojizas dirigidas hacia la zona

Fics. 16-18. Genitalia y venación alar del macho de Triptila septentrionalis n. sp.: Fig. 16 genitalia en vista ventral, Fig. 17

aedeagus en vista lateral y Fig. 18 venación de las alas anterior y posterior. Rs, M, Cu, y Aj: venas alares.

280

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS- SALAS

clara que rodea la mancha discal y dos líneas de

la misma naturaleza, una de las cuales cruza la

banda monoliforme del margen interno y la otra

sólo la toca en su límite externo. Banda terminal

amarillo-ceniciento. En la región media del mar-

gen interno de las alas existe un grupo de esca-

mas oscuras que se apoyan sobre las alas poste-

riores.

En la superficie ventral el color es uniforme:

castaño-ceniciento a bronceado en donde destaca

débilmente la mancha discal. El margen costal,

las bandas subterminal y adterminal y la región

que rodea la mancha discal son de color rosado

claro. El margen interno es blanco-bronceado.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 57): En

su superficie dorsal y ventral castaño-ceniciento a

bronceado; el lóbulo interno que va sobrepuesto

sobre las alas y el resto de la superficie alar, lleva

en sus bordes escamas piliformes concoloras al

color de las alas.

TAGMA ABDOMINAL (fig. 57): Compuesto por seis seg-

mentos. El segmento 2 y 3 subiguales entre sí y

mayores al resto de los segmentos. Dorsalmente y

en la región ventral posterior (segmentos 4-6)

concoloro con el color de fondo de las alas ante-

riores; porción ventral anterior (segmentos 1-3)

más clara (cremoso). Pleura con mechones de es-

camas, concoloros con el dorso del abdomen, en

la región intersegmentaria de los segmentos 2-3,

3-4, 4-5 y 5-6; pigidio con escamas y pelos de co-

lor gris, erguidos y dirigidos hacia atrás al igual

que en las pleuras, en su superficie ventral con

una fila de espinas dirigidas hacia atrás.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 16 y 17): Uncus delgado,

débil y pequeño (no alcanza la mitad de la longi-

tud de la valva), de punta aguda; socius ausente;

gnathos ausente; valvas 3 veces más largas que su

ancho máximo, en la región apical (región del cu-

cullus) con una hendidura regular profunda; sac-

culus normal; yuxta cuadrangular con una exten-

sión lateral trianguliforme a cada lado en la re-

gión posterior; saccus subcircular con dos ramas

laterales gruesas, vinculum poco desarrollado.

Aedeagus subigual al largo de la valva, borde

ventral cóncavo, aproximadamente 13 veces más

1cm

FiGs. 19-21. Genitalia y venación alar de la hembra de Triptila septentrionalis m. sp.: Figs. 19 y 20 genitalia en vista ventral

y dorso-lateral respectivamente y Fig. 21 venación de las alas anterior y posterior. 9 st: noveno esternite.

281

Gayana Zool. 55(4), 1991

largo que ancho; ductus seminalis emerge inme-

diatamente por detrás de la ampulla posterior del

aedeagus, vesica inerme.

EXPANSIÓN ALAR DEL HOLOTIPO: 31 mm.

DESCRIPCIÓN DEL ALOTIPO:

Similar al Holotipo (fig. 58) en todos sus caracte-

res, pero con algunas diferencias, éstas son: sin

mechón de pelos en las patas posteriores; superfi-

cie ventral del pigidio sin espinas; alas posteriores

sin lóbulo, venas Sc y Rs anastomosadas por una

larga distancia en la región central de la celda dis-

cal, venas Rs y M, pedunculadas por un corto

trecho (la tercera parte del tamaño de la celda),

vena M) levemente más cerca a Mz que a

Rs+M', venas Cu, y Cu) paralelas, con dos ve-

nas anales: A) y Az, esta última es corta y termi-

na en el margen anal del ala (fig. 21).

GENITALIA DE La HEMBRA (figs. 19 y 20): Bursa copu-

latrix globosa, pequeña, cuyo diámetro es subi-

gual al ancho del ductus bursae, signum ausente;

ductus bursae 5 veces más largo que ancho, ces-

tum subigual en tamaño al colliculum; ductus se-

minalis se abre dorsalmente, por sobre el cestum

desde una protuberancia membranosa del ductus

bursae;, apófisis anteriores y posteriores subi-

guales en longitud, ambas son largas y delgadas.

EXPANSIÓN ALAR DEL ALOTIPO: 32 mm.

PERIODO DE vuELO: Del 16 al 26 de febrero.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: El Canelo, Chile (33% 35'S

y 70% 27'W).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho (Holotipo), El Canelo, 19 febrero 1933, Coll. Ureta,

5820 (MNHN); 1 hembra (Alotipo), El Canelo, 16 febrero

1933, Coll. Ureta, 5822 (MNHN); 1 macho (Paratipo), El Ca-

nelo, 19 febrero, 1933, Coll. Ureta, 5820 (MN HN); 1 macho

(Paratipo), El Canelo, 19 febrero 1933, Coll. Ureta, 5819

(MNHN); 1 macho (Paratipo), El Canelo, 26 febrero 1933,

Coll. Ureta, 5821 (MNHN); 1 hembra (Paratipo), El Canelo,

16 febrero 1933, Coll. Ureta, (MNHN); 1 hembra (Paratipo),

El Canelo, 26 febrero 1933, Coll. Ureta, 5823 (MNHN).

282

OBSERVACIONES

Esta especie es la de distribución más sep-

tentrional; a diferencia de las otras el color de las

alas anteriores tienden al castaño.

Su distribución está relacionada con la zona

mesomórfica del país.

ETIMOLOGÍA

El nombre específico de la especie dice relación

con la distribución de la misma, en relación a las

demás especies del género (septemtrion = norte).

Triptila virescens (Philippi, 1873)

(Figs. 22-27 y 59-60)

Tomopteryx virescens Philippi, 1873, p. 315.

Rhopalodes virescens (Philippi) Butler, 1882,

Bartlett-Calvert, 1894, p. 524.

Triptila virescens (Philippi) Warren, 1908, p.

398.

Tipo:

M.N.H.N., Tipo N* 3.834. Depositado en

el Museo Nacional de Historia Natural,

Santiago, Chile (MNHN,) (vide).

DESCRIPCIÓN ORIGINAL

“Dorso de las alas anteriores de ámbito verdoso,

centro rojo-pálido, líneas transversas onduladas

color mármol oscuro (marmóreo), posteriores ce-

nicientas, lóbulo interno grande, orlado” (Philip-

pi, 1873; traducido del latín).

“Las antenas son grises en el dorso y rojas

en el vientre; los palpos grises, su último segmen-

to muy corto. Las escamas pilosas de la cabeza y

tórax son amarillo verdosas; en la tégula son lar-

gos y finos con manchas negras y en la punta lle-

va una mezcla de pelos y escamas. El extremo

posterior del abdomen está cubierto por escamas

grises-silberanas tupidas, mientras que en los bor-

des de cada segmento son largas y ralas. Las

extremidades están cubiertas por pelos grises cla-

ros y plateados. Las alas anteriores son anchas,

están bordeadas por largos pelos, también en el

ángulo. El lóbulo de esta especie es ancho y lar-

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

go, el lado dorsal está cubierto de pelos largos, en

cambio el inferior está prácticamente desnudo.

La ala anterior muestra un borde negro grisáceo

que resalta por el color claro de fondo, está rode-

ado por una línea ondulada rojo-claro, hacia el

interior el ala sigue verde con una línea negra on-

dulada atravesada por una línea diagonal y sobre

ella una roja clara, también hay una línea negra,

después rojo clara y luego negra y otras líneas

negras atravesadas. Todas estas líneas están bien

determinadas y en la base y en el borde de las alas

son en su mayoría verdes. El ala anterior en su

superficie ventral no es verde, sólo gris y roja; por

lo tanto son tan vistosas que a la vista no se reco-

nocen las diferencias de colores. Las líneas negras

de arriba en forma ondulada están débilmente vi-

sibles. Las alas posteriores están pintadas en am-

bos lados casi igual, gris fuerte y muy brillante”

(Philippi, 1873; traducido del alemán).

1mm

REDESCRIPCIÓN

TAGMaA cEFáLiCO (fig. 59): Frente con escamas

amarillo-verdosas; antenas simples, ensanchadas

en la mitad anterior para luego aguzarse hacia la

región del ápice, profusamente ciliada en su re-

gión ventral, cilias cortas, segmento basal con es-

camas amarillo-verdosas, escamas de la región

dorsal de color castaño; chaetosemata presente;

ocelos ausentes; ojos glabros; palpos labiales

diagonalmente dirigidos hacia arriba con las esca-

mas castaño oscura y claras y de color crema

entremezcladas, dispuestas radialmente al eje de

los segmentos; segmentos 1 y 2 subiguales en lon-

gitud, 4 veces mayores al segmento 3, el cual es

globoso.

TAcMa TOrRáciCO (fig. 59): Patagias con escamas

amarillo-verdosas claras en su región interna, las

Fias. 22-24. Genitalia y venación alar del macho de Triptila virescens (Philippi): Fig. 22 genitalia en vista ventral, Fig. 23

aedeagus en vista lateral y Fig. 24 venación de las alas anterior y posterior.

283

Gayana Zool. 55(4), 1991

cuales se hacen más oscuras hacia la región exter-

na, en donde existen unas pocas castaño-oscuras;

tégulas con escamas de color castaño claro y os-

curo y amarillo-verdosas en su región anterior,

hacia el extremo posterior las escamas se hacen

espatuladas a piliformes de color castaño claro y

crema; mesoscutum, mesoscutellum, metascu-

tum y metascutellum con escamas verdes y casta-

ño entremezcladas; el metascutum lleva en la re-

gión posterior y a ambos lados un penacho de es-

camas de color verde claro y crema. Ventralmen-

te el tórax está cubierto de escamas piliformes de

color crema. Patas mesotorácicas con la tibia su-

bigual en tamaño al fémur, tibia con un par de es-

polones en el margen terminal, el espolón interno

es 2 veces más largo que el externo. Tibias de las

patas posteriores 2 veces más largas que el fémur,

a la altura de sus 2/3 de longitud en el extremo

basal lleva dos pares de espolones, en los cuales el

interno es 2 veces mayor al externo; patas poste-

riores con un mechón de escamas piliformes que

nacen del fémur y de la articulación fémur-tibia,

este mechón es corto y alcanza una longitud un

poco mayor al ancho del fémur; tibia con un pin-

cel de pelos. Todas las patas llevan, en su superfi-

cie externa principalmente, bandas alternadas de

color castaño oscuro y crema.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 59): En la

superficie dorsal con una franja de color verde en

la región costal, externa e interna del ala, dejando

una figura subtriangular de color castaño claro

amarillento en el centro, la que en su tercio exter-

no de su borde interno tiene una mancha en for-

ma de punta de flecha de color castaño oscuro.

Toda la superficie del ala se encuentra atravesada

por líneas zigzagueantes de color castaño que

presentan las bandas basal, antemedial, medial,

postmedial y subterminal. La banda adterminal

es fina y destaca por el color amarillento que po-

see, la banda terminal está compuesta por

manchas triangulares de color castaño repartidas

entre las venas. Mancha discal pequeña, de color

castaño claro rodeada por una zona más clara

amarillo-cenicienta de forma subtriangular. En la

región media del margen interno de las alas existe

un grupo de escamas oscuras que se apoyan

sobre las alas posteriores.

En la superficie ventral, el color está dado

por manchas castañas y rosadas. El color rosado

se hace uniforme en el margen costal del ala con-

tinuándose en la región de la celda, en donde ro-

dea a la mancha discal castaña. La banda adter-

minal es fina y destaca por el color rosado que

posee. El margen interno es blanco-bronceado.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 59): Su-

perficie dorsal y ventral de color castaño claro ce-

niciento. Tanto el borde del ala como el lóbulo

que va sobrepuesto en ella llevan en su borde es-

camas piliformes concoloras.

TAGMA ABDOMINAL (fig. 59): Compuesto por 8 seg-

mentos. Segmentos 3 y 4 subiguales entre sí y

mayores al resto de los segmentos. Dorsalmente

(entre segmentos 3-8) de color castaño claro, los

dos primeros segmentos poseen una mezcla de es-

camas castaño oscuras y claras. Región ventral

de color crema. Pleura con mechones de escamas

pequeños, concoloros con el dorso del abdomen

(segmentos 3-8), en la región intersegmentaria de

los segmentos 3-4 y 4-5; pigidio con escamas cas-

taño claras, erguidas y dirigidas hacia atrás al

igual que en las pleuras, en su superficie ventral

con una fila de espinas dirigidas hacia atrás.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 22 y 23): Uncus delgado,

débil y pequeño (1/2 del largo de las valvas), de

extremo agudo; socius ausente; gnathos, ausente;

valvas aproximadamente 3 veces más largas que

su ancho máximo, apicalmente (región del cu-

cullus) con una hendidura pequeña, por el mar-

gen ventral y en el tercio distal con una escotadu-

ra en punta muy pronunciada; sacculus normal;

yuxta semitubular con dos proyecciones

subtriangulares laterales; saccus subtriangular

con dos proyecciones laterales que se comunican

con el vinculum; vinculum poco desarrollado.

Aedeagus subigual al largo de las valvas, lado

ventral cóncavo, aproximadamente 14 veces más

largo que ancho; ductus seminalis emerge inme-

diatamente por detrás de la ampulla anterior de

la funda; vesica inerme.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 39 mm.

DESCRIPCIÓN DE LA HEMBRA

Similar al macho (fig. 60), pero con algunas dife-

rencias que se detallan a continuación: ala poste-

rior sin lóbulo (fig. 27), fémur sin mechón de es-

camas en el ápice distal y tibia sin pincel de pelos.

284

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

za)

FIGs. 25-27. Genitalia y venación alar de la hembra de Triptila virescens (Philippi): Figs. 25 y 26 genitalia en vista ventral y

dorso-lateral respectivamente y Fig. 27 venación de las alas anterior y posterior.

GENITALIA DE LA HEMBRA (figs. 25 y 26): Bursa copu-

latrix globosa a elongada cuyo diámetro es subi-

gual al del ductus bursae; signum ausente; ductus

bursae 4.6 veces más largo que ancho, cestum su-

bigual en tamaño al colliculum; ductus seminalis

se abre dorsalmente, en el límite anterior del ces-

tum desde una protuberancia membranosa del

ductus bursae, apófisis anteriores y posteriores

subiguales en longitud, ambas son largas y delga-

das.

EXPANSIÓN ALAR DEL ALOTIPO: 35 mm.

PERÓDO DE vuELo: Entre el 22 de octubre al 3 de

marzo.

DISTRIBUCIÓN GEOGRAFICA: Quillota (32% 53'5S) a

Coyhaique (45% 345).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho (Holotipo), Col. Paulsen, 5.752, CHILE, M.N.H.N.

(MNHN); 1 hembra, TIRUA, 1% febrero 1952, Coll. G.

285

Monsalve, 5.757 (MNHN); 1 macho, Prov. Valdivia, Sto.

Domingo, Valdivia-CHILE, 13-1259, E. Krahmer (CK); 1

macho, Prov. Valdivia, Vald., CHILE, 14-1-59, E. Krahmer

(BMNH); 1 macho, Prov. Valdivia, Valdivia-CHILE, 15-1-

60, E. Krahmer (CK); 1 macho, Prov. Valdivia, Valdivia-

CHILE, 6-2-60, E. Krahmer (CK); 1 macho, Prov. Valdivia,

Valdivia-CHILE, 7-1-59, E. Krahmer (CK); 1 macho, Prov.

Valdivia, Valdivia-CHILE, 8-2-60, E. Krahmer (CK); 1

hembra, Prov. Valdivia, Valdivia CHILE, 16-2-60, E. Krah-

mer (CK); 1 macho, Prov. Valdivia, Valdivia-CHILE, 22-10-

59, E. Krahmer (CK); 1 macho, Valdivia, Dr. Reed, Coll.

Ureta, 5.753 (MNHN); 1 macho, Prov. Valdivia, Valdivia-

CHILE, 6-2-59, E. Krahmer (CK); 1 macho, Prov. Valdivia,

Valdivia- CHILE, 7-1-59, E. Krahmer (CK); 1 macho, Prov.

Valdivia, Vald., CHILE, 16-1-59, E. Krahmer (CK); 1

hembra, Quellón, Chiloé, 7-11-1956, J.S. Vargas coll.

(MNHN); 1 macho, Dalcahue, Isla Chiloé (E),

10.12-Febr.-54, Coll. L.E. Peña (MZUC); 1 hembra,

QUELLON, Chiloé, Enero 1955, J.S. Vargas (MNHN); 1

hembra, QUELLON, Chiloé, Enero 1955, J.S. Vargas

(MNHN); 1 hembra, Quellón, Chiloé, 12.11.1956, J.S. Vargas

Coll. (MNHN); 1 hembra Coyhaique, 1.34 (MNHN); 1

macho, Chaitén, 3-11-82, Cekalovic: coll. (MZUC); 1 macho,

QUELLON, Chiloé, Enero 1955, J.S. Vargas (MNHN); 1

macho, CARAMAVIDA, 5/10-11-1953, 1.000 mts.

(MNHN); 1 macho, Nahuelbuta, Río Picayquen, Dic. 22-62,

Fetis Coll. (MZUC); 1 macho, CARAMAVIDA, Nahuelbu-

ta (W), (Arauco) 750 m, 25,31-Dic-53, Coll: L.E. Peña

Gayana Zool. 55(4), 1991

(MZUC); 1 macho, Lonquimay, Cautín, 111951 (MZUC); 1

hembra, Termas de Río Blanco, Cautín. 3.51 (MZUC); 1

macho, Volcán Chillán, 3-111-1979, Trampas: coll (MZUC); 1

macho S.I. 15/87, Col. Paulsen, 5.754 (MNHN); 1 macho,

Quillota, 1-88, 5.755 (MNHN); 1 hembra, Valdivia, 1891,

5.758, Col. Paulsen (MNHN); 1 macho, Vald., 5.756

(MNHN); 1 macho, Col. 28-2-62, T. Río Blanco, E. Krahmer

(CK).

OBSERVACIONES

Esta especie se diferencia por poseer las alas ante-

riores de color verde en maculación. En general

existe poca diferencia con 7. septentrionalis n.

sp., pero a nivel de la genitalia la forma de la yux-

ta y de la bursa copulatrix son importantes, como

lo es también el patrón de maculación de las alas

anteriores, para diferenciarlas.

Esta especie es la de más amplia distribución

dentro del género, se encuentra entre las zonas

meso e higromórficas del país, probablemente es-

té ligada a alguna especie vegetal que está rela-

cionada con el bosque de Nothofagus.

Triptiloides n. gen.

ESPECIE TIPO DEL GÉNERO

Tomopteryx laeta Philippi, 1873.

DIAGNOSIS

El carácter diagnóstico para separar este género

de los otros es que las venas My Rs del ala poste-

rior nacen desde la mitad de la celda y el lóbulo

interno lleva una vena anal (figs. 30, 36, 42 y'48).

RECONOCIMIENTO

Cabeza sin ocelos; chaetosemata presente; ante-

nas engrosadas en casi toda su longitud para

luego terminar en un extremo agudo. Las alas an-

teriores pueden ser anchas como en 7. esmeralda

o estrechas como en 7. laeta, condición que las

acerca tanto a las especies del género Triptila co-

mo a Pachrophylla. La genitalia es muy diferente

entre las especies que lo componen. Los caracte-

res dados en la diagnosis permiten separar este

género de los otros considerados en el grupo.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA

Desde la Quinta a la Décima Región de Chile (Vi-

ña del Mar a Quellón, Chiloé).

ETIMOLOGÍA

El nombre del género está relacionado con el pa-

recido que hay entre las especies con las del géne-

ro Triptila (Triptila, oides = semejanza, imagen).

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO TRIPTILOIDES n. gén. BASADA EN LA MACULA-

CIÓN ALAR

l Polillas con un patrón de color general verde

Polillas con un patrón de color general castaño

Alas anteriores abigarradas con manchas pequeñas y líneas oscuras y claras (negras,

banca od A a T. esmeralda (Bartlett-Calvert) n. comb.

Alas anteriores abigarradas con bandas y manchas grandes, de color blanco, amarillo y

o T. laeta (Philippi) n. comb.

Alas anteriores con líneas o bandas antemedial y subterminal delgadas de color amarillo

O A T. krahmeri n. sp.

Alas anteriores con las bandas antemedial y subterminal gruesas de color castaño oscu-

ro, limitadas por líneas NegraS ......ooncncoinnnncnccconcnss T. fissa (Felder 8 Rogenhofer) n. comb.

286

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DE TRIPTILOIDES n. gén., BASADA EN LA GENITALIA DEL

MACHO

]

Apice de las valvas con una hendidura de bordes rectos, aedeagus con cornuti

1? Apice de las valvas con una hendidura de bordes irregulares, aedeagus sin cornuti ..........

O A A MN o A cias T. krahmeri n. sp.

2(1) Apice anterior del saccus truncado ..oocciccoccnccnonos T. fissa (Felder € Rogenhofer) n. comb.

2 ADE iO de A EA ROO 3

3(2) Yuxta ahorquillada en el borde posteriOT c.oociccnnnonnnoncinicns T. laeta (Philippi) n. comb.

3" — Yuxtaemarginada en el borde posterior ........... T. esmeralda ((Bartlett-Calvert) n. comb.

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GÉNERO TRIPTILOIDES n. gén., BASADA EN LA GENITAIA

DE LA HEMBRA

1 BUSCO A Eso IO UE ON COR SINENO SA Deacon snenass 2

DEACERO A RO PARARON RRE: 3

2(1) Bursa copulatrix con una franja de microespinas amplia en su base y protuberancias en

INTE O T. fissa (Felder € Rogenhofer) n. comb.

2? Bursa copulatrix desnuda y sin protuberanciaS ....ociccninononinoos. T. laeta (Philippi) n. comb.

3(1) Apófisis anteriores pequeñas, 0,5 veces el largo de las pOSterIOTES c.0oooccciccnnonncnccnocicncnnnss

Ot coa oo T. esmeralda (Bartlett-Calvert) n. comb.

3 Apófisis anteriores largas, subiguales a las pOSterlOTES ...ocoooccononociciniconoos T. krahmeri n. sp.

Triptiloides esmeralda (Bartlett-Calvert, 1893)

n. comb.

(Figs. 28-33 y 61-62)

Rhopalodes esmeralda Bartlett-Calvert, 1893, p.

825.

Tipo

Holotipo extraviado, Neotipo. Hembra,

Valdivia-I. Teja, 28/09/1986, Coll. D.

JACKSON. Depositado en el Museo de

Zoología de la Universidad de Concepción,

Concepción, Chile (MZUC).

DESCRIPCIÓN ORIGINAL:

“Las alas anteriores por encima de un verde apa-

gado, la costa manchada de blanco, el margen ex-

terno negro, las franjas alternativamente blancas

y negras; las alas posteriores de un color dorado

casi blanco, con una línea angulosa de un rosado

subido más allá del medio y una nébula rosada

sobre el disco; margen externo amarillo-pálido;

las franjas blancas; tórax y cuerpo blanquizco;

por debajo, las alas anteriores son de un rosado

287

apagado con el margen interno de un amarillo

blanquizco, una gran mancha apical negra, en-

cerrando en sí otra mancha triangular en la costa,

de un amarillo pálido; la mitad posterior del mar-

gen externo es algo dorado; las alas posteriores

son de un tinte combinado de rosa y amarillo con

la línea transversal del lado superior y una

mancha en la célula de color rosado oscuro; el

vientre blanco sucio; las patas y antenas more-

nas” (Bartlett-Calvert, 1893).

REDESCRIPCIÓN:

TAGMA CEFÁLICO (fig. 61): Frente con escamas casta-

ño oscuras; vertex con escamas blancas; ocelos

ausentes; chaetosemata presente; antenas gruesas

terminadas en una punta aguda y estrecha, su ba-

se con escamas blancas hacia la región lateral y

posterior y escamas oscuras en la porción ante-

rior; superficie dorsal con escamas castañas, su-

perficie ventral ciliada. Palpos labiales cubiertos

de escamas castaño oscuras, el segmento 2 es 4

veces más largo que el segmento 3, éste último es

globoso.

Gayana Zool. 55(4), 1991

FiGs. 28-30. Genitalia y venación alar del macho de Triptiloides esmeralda (Bartlett-Calvert) n. comb.: Fig. 28 genitalia en

vista ventral. Fig. 29 aedeagus en vista lateral y Fig. 30 venación de las alas anterior y posterior. Rs y M,: venas alares.

TAGMA TORÁCICO (fig. 61): Patagias cubiertas en su

mayor parte por escamas blancas, hacia el borde

externo y la base lleva escamas castaño claras; té-

gulas pequeñas, cubiertas por escamas blancas,

las que hacia su ápice se tornan castaño claras a

negras. Pronotum cubierto por escamas castaño

oscuras a negras. Mesoscutellum y metascutum

con dos franjas laterales de escamas negras y una

franja central blanca, en el ápice del metascutum

(ambos lados) lleva un par de penachos con esca-

mas negras, blancas y castaño claras; metascu-

tellum similar al patrón presentado por el mesos-

cutellum. Patas en la región de la tibia y tarsos

anillados por bandas negras y blancas; fémur en

su cara externa castaño oscuro a negro e interna-

mente crema. Tibias mesotorácicas con un par de

espolones apicales, en donde el espolón interno es

dos veces más largo que el externo. Fémur meta-

torácico con un mechón de escamas piliformes en

el extremo distal interno; tibias con dos pares de

288

espolones: un par medial y otro apical, en ambos

el interno es dos veces más largo que el externo.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 61): El

patrón general es de un color verde tenue abi-

garrado con manchas oscuras y claras. Región

basal con una mancha blanca limitada externa-

mente por una línea castaño (banda basal) ondu-

lada, en el centro de esta mancha blanca existe

una mácula reniforme de color castaño oscuro.

Franja entre la banda basal y antemedial de color

verde tenue con una mancha orbicular rosada en

el sector de la costa. Banda antemedial cons-

truida por una franja castaño oscura, la que en el

límite interno, entre el tronco radial y la vena

Cu), lleva una banda estrecha de color rosado; en

la costa por el borde interno de la banda existe

una franja delgada de escamas blanco-verdosas.

Región de la costa desde la banda antemedial y

por sobre el tronco radial de color blanco-

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

verdoso, sobre el cual destacan la mancha discal

subtriangular y cuatro líneas angulosas relativa-

mente gruesas que representan el límite superior

de las bandas medial y postmedial; toda esta re-

gión clara limita externamente con la banda sub-

terminal de color castaño verdoso, que se extien-

de como franja hasta la vena M) y de ahí en for-

ma de línea castaño oscura con grupos de esca-

mas blancas, hacia el margen interno del ala.

Banda medial y posterminal formadas por cuatro

líneas castaño ozcuras (por debajo del tronco ra-

dial) que se unen hacia el margen interno del ala.

Bandas adterminal y terminal constituidas por

grupos de escamas triangulares castaño oscuras,

entre las cuales aparecen manchones de escamas

verdosas tenues. Apice del ala con una mancha

triangular blanco-sucio. Superficie ventral de un

color castaño verdoso, en donde destaca clara-

mente la banda subterminal por su color blanco-

sucio. El resto de las áreas (bandas medial, post-

medial, basal y antemedial) representadas por

franjas castaño oscuras. Mancha discal castaño

oscura. Región basal verdosa. Apice alar castaño

rojizo con el extremo levemente aclarado hasta

blanca.

1mm

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 61): Su-

perficie dorsal y ventral blanco-sucio a dorado.

La superficie ventral tiene más marcada esta ten-

dencia y la mancha discal es notoria por su color

castaño oscuro.

TAGMA ABDOMINAL (fig. 61): Superficie dorsal y

ventral blanco-sucio y la región intersegmental

con escamas negras. Pigidio con escamas blancas

pilosas.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 28 y 29): Uncus ancho,

subrectangular, terminado en una punta aguda, 5

veces más largos que ancho y 4 veces más corto

que las valvas; gnathos ausente; socius ausente;

valvas 2,5 veces más largas que su ancho máxi-

mo, hinchadas en su borde ventral en la región

media, tercio apical estrecho, ápice dividido por

una hendidura poco profunda; saccus normal;

yuxta subcuadrangular con una proyección

doble en el ápice, en su borde posterior; saccus

subtriangular amplio. Aedeagus subigual en lar-

go a las valvas, 8 veces más largo que ancho; duc-

tus seminalis emerge del tercio anterior de la fun-

da; vesica armada por un conjunto de espinas pe-

queñas.

1cm

Elas. 31-33. Genitalia y venación alar de la hembra de Triptiloides esmeralda (Bartlett-Calvert) n. comb.: Figs. 31 y 32 ge-

nitalia en vista ventral y dorsal respectivamente y Fig. 33 venación de las alas anterior y posterior.

289

Gayana Zool. 55(4), 1991

EXPANSIÓN ALAR DEL MACHO: 34 mm.

REDESCRIPCIÓN DE LA HEMBRA (fig. 62): Similar al

macho, pero difiere en que no tiene lóbulo en las

alas posteriores, la cual lleva una sola vena anal

(A) (fig. 33) y el fémur posterior no tiene

mechón de escamas en el ápice distal interno.

GENITALIA DE LA HEMBRA (figs. 31 y 32): Bursa copu-

latrix globosa, subesférica, membranosa; ductus

bursae subigual al largo de la bursa, 6 veces más

largo que ancho, haciéndose cada vez más ancho

a medida que se acerca a la bursa; cestum 1/6 de

la longitud del ductus, colliculum subigual en ta-

maño al cestum; ductus seminalis llega al ductus

en el límite anterior del cestum. Apófisis poste-

riores 3 veces más largas que las anteriores.

EXPANSIÓN ALAR DE LA HEMBRA: 35 MM.

PERÍODO DE VUELO: Septiembre a abril.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Curacautín (38% 26'S) a

Quellón (Chiloé) (43% 07'S).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho, QUELLON, 17. Abril. 1955, (MNHN); 1 macho,

Puerto Octay, 27.X.1955, E. Oherens (MNHN); 1 macho,

Puerto Octay, 18.X.1955, E. Oherens (MNHN); 1 macho,

E.G. Centinela, 12-XI-55 (MNHN); 1 hembra, Puerto Octay,

6.X1.1955, E. Oehrens Coll. (MNHN); 1 hembra, SIN DA-

TOS (MNHN); 1 hembra, Estación Centinela, Puerto Octay,

13.X1.1955, E. Oehrens Coll. (MNHN); 1 hembra, Puerto

Octay, 20.X.1955, E. Oherens (MNHN); 1 hembra, Río

Blanco, Curacautín, 26-XII-1946, A. Wagenknecht

(MNHN); 1 hembra (Neotipo), Valdivia-I. Teja, 28/09/1986,

Coll. D. JACKSON (MZUC); 1 hembra, VALDIVIA-1. Te-

ja, 18/10/86, Coll. D. JACKSON (MZUC); 1 hembra,

Valdivia-I Teja, 24/10/86, Coll. D. JACKSON (MZUC); 1

hembra, Valdivia-l Teja, 24/10/86, Coll. D. JACKSON

(MZUC); 1 hembra, Valdivia, (Naguilan), 6/4/56, A.W.H.

(MNHN); 1 hembra, E.G. Centinela, 11-X1-55 (MNHN); 1

hembra, Valdivia-1. Teja, 7/10/1986, Coll. D. JACKSON

(MZUC);, 1 hembra, Valdivia-I. Teja, 24/10/86; Coll. D.

JACKSON (MZUC); 2 hembras, Col. 20-11-62, LLAN-

CAHUE. E. Krahmer (CK); 1 hembra, Prov. Valdivia, Sto.

Domingo, Valdivia CHILE, 26. 4-82, E. Krahmer (CK); 1

hembra, Col. 20-X1-62, LLANCAHUE, E. Krahmer (CK); 1

hembra, Col. 2-11-62, LLANCAHUE, E. Krahmer (CK).

OBSERVACIONES

Esta especie es muy llamativa por sus colores

290

contrastantes que van desde el verde pasando por

el rosado para llegar al negro (abigarrado). Tal

vez ésta sea la especie que más semejanza tenga

con el género Triptila, pero los caracteres de la

genitalia del macho como de la hembra la hacen

diferente.

La especie está distribuida en la zona higro-

mórfica del país, principalmente en el sector de la

Selva Valdiviana, en donde predominan los bos-

ques de Nothofagus.

Triptiloides fissa (Felder 8 Rogenhofer, 1875)

n. comb.

(Figs. 34-39 y 63-64)

Tomopteryx fissa Felder € Rogenhofer, 1875,

5(2): pl. 131, figs. 16 and 17.

Tipo

Holotipo y Alotipo, depositados en el

British Museum (Natural History Londres,

Inglaterra (BMNH) (vide).

DESCRIPCIÓN:

TAGMA CEFAÁLICO (fig. 63): Frente castaño oscuro, en

la base con escamas cremas; vertex, base y super-

ficie dorsal de la antena cubierta por escamas cre-

mas, ocelos ausentes; chaetosemata presente; an-

tenas gruesas y terminadas en una punta estrecha

y aguda, superficie ventral ciliada. Palpos

prorrectos dirigidos hacia arriba, cubiertos por es-

camas blancas y rojizas, segmento 2, tres a cuatro

veces más largo que el segmento 3, el cual es glo-

boso.

TacmMa TORÁCICO (fig. 63): Patagias y tégulas com-

puestas por escamas castaño claras, pronotum

con penacho de escamas castaño claras a grises;

mesoscutum con una línea central de escamas le-

vantadas. Toda la superficie dorsal de color casta-

ño claro a grisáceo. Mesoscutum con un par de

penachos de escamas castaño oscuras a rojizas.

Superficie ventral cubierta por escamas pilosas

cremas. Patas con el fémur y tibias en la superfi-

cie externa con escamas negras y rojizas; tarsos

con escamas rojizas, superficie interna de color

crema. Tibias mesotorácicas con un par de espo-

lones apicales rojizos, en donde el espolón inter-

no es 1/3 más largo que el externo. Fémur meta-

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

torácico con un mechón de escamas piliformes

cremas en el ápice distal interno; tibias con un

pincel de pelos y dos pares de espolones: un par

medial y otro apical, en ambos el espolón interno

es 2 veces más largo que el externo.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 63): Su-

perficie dorsal castaño ceniciento. Las bandas ba-

sal y antemedial representadas por franjas casta-

ño oscuras y limitadas por líneas negras; región

basal e mter bandas basal y antemedial castaño

grisáceas. Banda subterminal subtriangular, se

distribuye desde la costa hasta la vena M,, es de

color castaño oscuro y está rellenada con líneas

negras; desde la vena M) hacia el margen interno

se prolonga en tres líneas castaño claras, borde-

adas por escamas claras (casi blancas). Bandas ad-

terminal y terminal representadas por líneas de

escamas blancas y franjas castaño oscuras, que

no llegan hasta el ápice. Superficie ventral de co-

lor gris con la región apical castaño-rojiza, en

donde destaca la mancha discal en forma de un

círculo negro y la banda subterminal marcada

por grupos de escamas negras.

1cm

FIGs. 34-36. Genitalia y venación alar del macho de Triptiloides fissa (Felder € Rogenhofer) n. comb.: Fig. 34 genitalia en

vista ventral, Fig. 35 aedeagus en vista lateral y Fig. 36 venación de las alas anterior y posterior.

291

Gayana Zool. 55(4), 1991

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 63): Su-

perficies dorsal y ventral blancas, en el vientre

destaca la mancha discal como un punto negro y

la región costal-basal por un conjunto de escamas

plomizas dispersas.

Tacma ABDOMINAL (fig. 63): Gris con los límites seg;

mentarios más oscuros (línea de escamas castaño

oscuro a negras) en la superficie dorsal. Superficie

ventral blanca en la región anterior y gris hacia el

extremo posterior. Pigidio con escamas grises a

castaño.

GENITALIA DEL Macho (figs. 34 y 35): Uncus 10 veces

más largo que ancho, terminado en punta, sólo

alcanza la mitad del largo de las valvas; socius

ausente; gnathos ausente; valvas 3 veces más lar-

gas que anchas, tercio apical más estrecho, borde

apical dividido por una hendidura poco profun-

da; sacculus normal; yuxta subcuadrangular con

una proyección posterior subtriangular de ápice

excavado; saccus subtriangular con el ápice ante-

rior trunco. Aedeagus subigual al tamaño de las

valvas, vesica armada por un conjunto de espi-

nas.

EXPANSIÓN ALAR DEL MACHO: 23 mm.

DESCRIPCIÓN DE LA HEMBRA (fig. 64): Similar al macho

en los patrones de maculación y estructura gene-

ral. Difiere en que las alas posteriores no llevan

un lóbulo y no están divididas, con una sola vena

anal (A)) (fig. 39). El color de las alas posteriores

es gris y la mancha discal es notoria en la superfi-

cie dorsal. El extremo externo es gris oscuro y es-

tá limitado hacia el interior por una línea de esca-

mas castaño oscuras. Tibias sin un pincel de pelos

y fémur sin un mechón de escamas.

lem

38 39

Filas. 37-39. Genitalia y venación alar de la hembra de Triptiloides fissa (Felder £ Rogenhofer) n. comb.: Figs. 37 y 38 geni-

talia en vista ventro-lateral y dorso-lateral respectivamente y Fig. 39 venación de las alas anterior y posterior.

292

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

GENITALIA DE LA HEMBRA (figs. 37 y 38): Bursa copu-

latrix globosa, 2 veces más larga que ancha, en su

tercio anterior lleva dos protuberancias membra-

nosas, su tercio posterior lleva una banda amplia

de microespinas en la superficie interna; ductus

bursae 4 veces más largo que su ancho máximo y

es 1/3 más corto que la bursa; cestum 1/4 de la

longitud del ductus;, colliculum membranoso;

ductus seminalis emerge desde una protuberancia

membranosa por sobre el cestum. Apófisis poste-

riores 1/3 más largas que las anteriores.

EXPANSIÓN ALAR DE LA HEMBRA: 30 mm.

PERÍODO DE vuELo: Entre el 18 de julio al 24 de mar-

ZO.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Viña del Mar (33% 02'S) a

Cordillera de Nahuelbuta: Río Pycoyquén (37%

47'S).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho, Viña del Mar, 8 agosto 1953, 5.772 (BMNH); 1

macho, Viña del Mar, 15-VII1-1953, 5.777 (MNHN); 1

macho, Viña del Mar, 5-1X-1953, 5.773 (MNHN); 1 macho,

Viña del Mar, 8 agosto 1953 (MNHN); 1 macho, Guayacán,

23.X.1943, Dr. Peña, COLL. URETA (MNHN); 1 hembra,

Concepción, 28-1-61, Trampa: Coll. (MZUC); 1 hembra, Chi-

guayante, Manquimávida, 25-X-51, Hulot: Coll. (BMNH); 1

hembra, Nahuelbuta, Río Picoyquén, Dic. 22. 62, Fetis Coll.

(MZUC); 1 hembra, El Canelo, 5.X1.59 (MZUC); 1 hembra,

Viña del Mar, 18-VI1-1953, 5.793 (MN HN); 1 hembra, Viña

del Mar, 15. Agosto. 1953. 5.792 (MNHN); 1 hembra,

Araucanía, Feb. 88, Col. Paulsen, 5.791 (MNHN); 1 hembra,

Viña del Mar, 30-X-1953, 5.790 (MNHN); 1 hembra, Con-

cepción, 17-X-60, Trampa: Coll., Fototrópica (MZUC); 1

hembra, Concepción, 25-1-61, Trampa: Coll. (MZUC);, 1

hembra, El Canelo, 5.X1.49 (MZUC); 1 macho, Nahuelbuta,

Río Picoyquén, Dic. 22. 62, T:C:K: Coll., Fototrópica

(MZUC); 1 macho, Chiguayante, Manquimávida, 26-X-61,

Hulot: Coll., Fototrópica (MZUC); 1 hembra, Concepción,

7-X1-59, Trampas: Coll., Fototrópica (MZUC); 1 hembra,

Chiguayante, Manquimávida, 14-VIII-61, Hulot: Coll., Fo-

totrópica (MZUC); 1 hembra, Guayacán, Santiago, X11-50

(MZUC); 1 hembra, Termas de Río Blanco, Cautín II. 51

(MZUC); 1 hembra, Concepción, 11 22-X1-60, Trampa: Coll.,

Fototrópica (MZUC): 1 macho, Concepción 7-XIL-61, Tram-

pa: Coll., Fototrópica (MZUC); 1 macho, Guayacán, San-

tiago, XII-50 (MZUC); 1 macho, Termas de Río Blanco,

Cautín 3.51 (MZUC); 1 macho, Concepción, 7-XI1-60, Tram-

pa: Coll., Fototrópica (MZUC); 1 macho, Concepción, 13-I1-

60, Trampa: Coll., Fototrópica (MZUC); 1 macho, Villa Sta.

Julia, Km 25. Cam. Bulnes, 24-marzo-1971, Trampas: Coll.

(MZUC); 1 macho, Yepo, Linares, O. Barros, 12.X.51

(MZUC); 1 macho, Cocalan, 9-1-86, Parra: Coll. (MZUC); 1

macho, ATACALCO, Chillán, 28.X1.1951, L.E. PEÑA

(MZUC); 1 macho, Concepción, 21-X1-60, Trampas: Coll.,

293

Fototrópica (MZUC); 1 macho, Curillinque, 16-X-1949

(MZUC); 1 macho, Concepción, 10-XI1-60, Trampa: Coll.,

Fototrópica (MZUC); 1 macho, C. Bulnes K. 25, 16-1-1982,

Trampas: Coll. (MZUC); 1 macho, Cobquecura, enero 12-29

1972, Ramírez Coll., CHILE, Ñuble (MZUC); 1 macho, Al-

falfan, XIL88, Col. Paulsen 5.778 (MNHN); 1 hembra, El

Canelo, 5.X1.49 (MZUC).

OBSERVACIONES:

Esta especie es la más notoria dentro del género

por la forma de sus alas posteriores, en que prác-

ticamente cada una de las venas termina en una

prolongación del ala. En relación a las demás es-

pecies del género se asemeja más a T. esmeralda

en cuanto a morfología externa, más que nada en

la forma de las alas anteriores. En las otras espe-

cies las alas son más estrechas, del tipo Pachro-

phylla (Parra, 1991).

La especie está distribuida principalmente a

través de la costa, probablemente siguiendo el de-

sierto coquimbano e introduciéndose hacia el

bosque valdiviano del norte (del río Bío Bío al

sur) por la Cordillera de la Costa y de los Andes.

Triptiloides krahmeri n. sp.

(Figs. 40-45 y 65-66)

Tipos:

Holotipo: Macho. Prov. Valdivia, Vald.,

Chile, 15-1-59, E. Krahmer. Depositado en

el Museo Nacional de Historia Natural,

Santiago, Chile (MNHN).

Alotipo: Hembra. Prov. Valdivia, Valdivia-

Chile, 15-3-61, E. Krahmer. Depositado en

el Museo Nacional de Historia Natural,

Santiago, Chile (MNHN).

DESCRIPCIÓN DEL HOLOTIPO:

TAGMA CEFÁLICO (figs. 65): Frente con escamas

amarillo-verdosas y cremas; antenas simples, pro-

fusamente ciliadas en su región ventral, cilias cor-

tas; segmento basal con escamas claras y castaño

oscuras; ocelos ausentes; chaetosemata presente;

ojos glabros; palpos labiales diagonalmente dirigi-

dos hacia arriba, segundo segmento 4 veces más

grande que el primero y cubierto con escamas

ferrugíneas, castañas y cremas, las cuales se dis-

ponen radialmente al eje del segundo segmento,

sobresaliendo por los bordes, primer segmento

Gayana Zool. 554), 1991

con escamas negras y cremas, último segmento

pequeñísimo y las escamas como en el segundo

segmento.

Tama torácico (figs. 65): Patagias con escamas

amarillo-verdosas y cremas; tégulas con escamas

amarillo-verdosas en su región media, cremas en

su región periférica y castaño oscuras a negras en

la zona basal (o de inserción), del lado más exter-

no nacen escamas piliformes, mesoscutum y me-

soscutellum, entre las tégulas, cubiertos en toda

su superficie por un penacho de escamas castaño

claras y cremas; metascutum cubierto por esca-

mas amarillentas delimitadas por escamas casta-

ño oscuras (las que también dibujan una franja

central); metascutellum con tres penachos pe-

queños de escamas de color crema y de ápice cas-

taño oscuro, dos de éstos nacen dorsalmente si-

guiendo las franjas oscuras del mesoscutum, el

tercero nace por debajo del metascutellum.

Ventralmente está cubierto por escamas pilifor-

mes de color crema. Tibia, ésta lleva en su mitad

basal la epífisis que llega hasta el límite en el cual

comienzan los tarsos; tibias mesotorácicas con un

par de espolones, el espolón interno dos veces

más largo que el externo. Tibia de las patas poste-

riores a la altura de sus 2/3 de longitud y en el

extremo basal lleva dos pares de espolones, en los

cuales el espolón interno es un 25% mayor que el

externo, con un pincel de pelos que nace en su

extremo proximal y que llega hasta el lugar en

que nacen el primer par de espolones; fémur con

un mechón de escamas en el ápice distal interno.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 65): En la

superficie dorsal con un color de fondo castaño-

ceniciento, en donde aparecen bien marcadas las

bandas antemedial y subterminal por su color

amarillo-verdoso y la mancha discal pequeña, de

color negro, alargada en el sentido antero-

posterior. Desde el sector de las venas mediales y

por el lado externo de la banda subterminal hasta

el ápice del ala, hay un grupo de escamas de color

castaño oscuro. Banda terminal zigzagueante,

Filas. 40-42. Genitalia y venación alar del macho de Triptiloides krahmeri n. sp.: Fig. 40 genitalia en vista ventral, Fig. 41

aedeagus en vista lateral y Fig. 42 venación de las alas anterior y posterior.

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

compuesta de escamas negras, de cuyo borde ex-

terno emergen manchas amarillo-verdosas débi-

les. Región costal del ala salpicada con escamas

oscuras. En la superficie ventral, el color es uni-

forme: castaño-ceniciento a bronceado, en donde

destaca débilmente la mancha discal.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 65): En

su superficie dorsal y ventral castaño-ceniciento a

bronceado; el lóbulo en su borde anal lleva esca-

mas piliformes blancas.

TAGMA ABDOMINAL (fig. 65): Dorsalmente y en la re-

gión ventral posterior de igual color al fondo de

las alas anteriores; porción ventral anterior más

clara (cremosa). Pigidio con escamas y pelos de

color crema y grises, erguidas y dirigidas hacia

atrás.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 40 y 41): Uncus delgado,

levemente curvado, de punta roma, no más largo

que la mitad de la valva; socius ausente; gnathos

ausente; valvas 3 veces más largas que su ancho

máximo, apicalmente (región del cucullus) con

una hendidura irregular poco profunda; sacculus

normal; yuxta subromboídea, en el extremo pos-

terior con dos evaginaciones laterales; saccus en

forma de medialuna, en su borde postero-medial

con una prolongación rectangular que no alcan-

za a tocar la yuxta; vinculum poco desarrollado.

Aedeagus subigual al largo de la valva, borde dor-

sal recto, borde ventral levemente curvado, apro-

ximadamente 8 veces más largo que ancho; duc-

tus seminalis ubicado a 1/4 del extremo posterior

de la funda del aedeagus, vesica inerme.

EXPANSIÓN ALAR DEL HoLoTIPO: 47 mm.

DESCRIPCIÓN DEL ALOTIPO:

Similar al holotipo (fig. 66) en todos sus caracte-

res, pero con algunas diferencias; éstas son: alas

anteriores más anchas, con colores más fuertes y

FiGs. 43-45. Genitalia y venación alar de la hembra de Triptiloides krahmeri n.sp.: Figs. 43 y 44 genitalia en vista ventral y

dorsal respectivamente y Fig. 45 venación de las alas anterior y posterior.

295

Gayana Zool. 55(4), 1991

contrastantes que las del macho, vena Ry no lle-

ga al ápice del ala anterior, sino que lo hace a la

región costal de la misma; alas posteriores sin ló-

bulo, vena Sc y Rs anastomosadas por una corta

distancia en la mitad de la celda discal, venas Rs

y M; pedunculadas, las que se bifurcan en 1/3

distal del ala, con una vena anal (A)) (fig. 45). Sin

pincel de pelos en las patas posteriores y mechón

de escamas en el fémur.

GENITALIA DE La HEMBRA (figs. 43 y 44): Bursa copu-

latrix globosa, subpiriforme; signum ausente;

ductus bursae 3 veces más largo que ancho, ces-

tum la mitad del largo del ductus bursae, collicu-

lum corto; ductus seminalis se abre dorsalmente,

por sobre el cestum y bajo el límite posterior de la

bursa, desde una protuberancia membranosa del

ductus bursae; apófisis anteriores y posteriores

subiguales en longitud, ambas son largas y delga-

das.

EXPANSIÓN ALAR DEL ALOTIPO: $0 mm.

Perlopo DE vueLo: Entre el 15 de enero al 11 de

abril.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Concepción (36% 50'S) a

Valdivia (39% 48'S).

MATERIAL EXAMINADO:

1 macho (Holotipo), Prov. Valdivia, Vald., Chile, 15-1-59, E.

Krahmer (MNHN); 1 hembra (Alotipo), Prov. Valdivia,

Valdivia-Chile, 15-3-61, E. Krahmer (MNHN); 1 macho (Pa-

ratipo), Pichinahuel, 1.100, 1.400 m, Nahuelbuta W

(Arauco), 23, 31-enero 54, Coll L.E. Peña (MZUC); 1 macho

(Paratipo), Concepción, 11-1V-61, Trampas Coll., Fototrópi-

ca (MZUC); 1 macho (Paratipo), Concepción, 30-I11-60,

Trampas Coll, Fototrópica (¡MNH); 1 macho (Paratipo),

Prov. Valdivia, Valdivia CHILE, 28-3-60. E. Krahmer

(MNHN); 2 machos (Paratipo), Prov. Valdivia, Valdivia-

CHILE, 25-3-60, E. Krahmer (MZUC); 1 macho (paratipo),

Prov. Valdivia, ValdiviaCHILE, 30-3-60, E. Krahmer

(MNHN); 1 macho (Paratipo), 90 (MN HN); 1 hembra (Para-

tipo), Araucanía, Feb. 88 (MNHN).

OBSERVACIONES

Especie muy uniforme en colorido entre el

macho y la hembra, destaca el mayor contraste

del color en la hembra. Fácilmente reconocible

por las bandas antemediana y subterminal debido

a su color amarillo-verdoso. El lóbulo de las pos-

teriores es pequeño y va sobrepuesto sobre las

alas.

Su distribución geográfica está limitada a la

zona higromórfica de Chile, con cierta tendencia

a mantenerse entre el valle central y la zona cos-

tera, subiendo en altura en la Cordillera de

Nahuelbuta (IX Región).

ETIMOLOGÍA

Dedicamos esta especie al Sr. Ernesto Krahmer.

Triptiloides laeta (Philippi, 1873) n. comb.

(Figs. 46-51 y 67-68)

Tomopteryx laeta Philippi, 1873; p. 314.

TIPOS

Holotipo extraviado, Neotipo. Macho,

Prov. Valdivia, Sto. Domingo, Valdivia-

CHILE, 8-12-82, E. Krahmer. Depositado

en el Museo Nacional de Historia Natural,

Santiago, Chile (MNHN).

DESCRIPCIÓN ORIGINAL

“Las antenas son castaño claro y las escamas que

cubren la cabeza, cuerpo y abdomen son ama-

rillas; las partes inferiores del cuerpo están cu-

biertas con pelos casi blanco plateados. Las alas

anteriores son casi triangulares, el borde anterior

está un poco curvado, el tipo de ala posterior dis-

ta poco del ala anterior”. (Philippi, 1873; traduci-

do del alemán).

REDESCRIPCIÓN

TAGMA CEFÁLICO (fig. 67): Frente y vertex con esca-

mas verde-claras abigarradas con escamas oscu-

ras, ocelos ausentes, chaetosemata presente; an-

tenas gruesas terminadas en punta, la base de co-

lor similar al vertex, superficie dorsal con esca-

mas castaño y castaño oscuras, superficie ventral

ciliada. Palpos labiales cubiertos de escamas cas-

taño oscuras, segmento 2 cuatro veces más largo

que el segmento 3, el cual es globoso.

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

TacMa TORÁCICO (fig. 67): Patagias verde-

amarillentas; tégulas verdosas, pero mucho más

claras que las patagias; los tres segmentos toráci-

cos son similares en color a las tégulas y con un

par de penachos en el metascutum. Superficie

ventral cubierta por escamas pilosas de color cre-

ma. Patas torácicas con la superficie externa cas-

taño oscura a rojiza, superficie interna crema. Ti-

bias mesotorácicas con un par de espolones api-

cales, en donde el espolón interno es dos veces

más largo que el externo. Fémur con un mechón

de pelos en el ápice distal interno; tibias con dos

pares de espolones: un par medial y otro apical,

en ambos el espoloón interno es 1/3 más largo

que el externo.

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS ANTERIORES (fig. 67):

Patrón general de color verde claro alternado con

manchas blancas y castaño rojizas. Banda basal

blanca y curvada hacia afuera en la región del

tronco medial, para unirse luego con la mancha

triangular blanca que contiene la mácula discal

puntiforme de color castaño. Banda postmedial

representada solamente en el margen costal por

una franja estrecha de color blanco. Apice del ala

con una pequeña banda blanca y una mancha

más grande de color castaño rojizo que se prolon-

ga en forma diagonal hacia el interior del ala, en

forma de una banda que se curva hacia la región

basal (hasta la banda basal-antemedial) en el sec-

tor del tronco medial y extendiéndose en forma

de punta triangular hacia el tornus del ala. Mar-

gen interno, entre el tornus y base del ala, con

cuatro manchas blancas (la primera más pequeña

y estrecha) que se dirigen hacia el interior del ala.

Superficie ventral con colores tan contrastados

como la superficie dorsal. Región basal y central

rosada, borde interno blanco amarillento; tercio

central de la costa verde amarillento, en donde

destaca la mancha discal castaño oscura; hacia el

margen externo y en la base de una gran mancha

apical castaño rojiza, hay una mancha cuadran-

gular verde-amarillenta, cuyo centro lleva un

punto castaño. La mancha apical lleva dos líneas

verde amarillentas, la interna es más larga y an-

gulosa, y la externa es corta y está diagonalmente

dirigida hacia adentro.

1cm

FIGS. 46-48. Genitalia y venación alar del macho de Triptiloides laeta (Philippi) n. comb.: Fig. 46 genitalia en vista ventral,

Fig. 47 aedeagus en vista lateral y Fig. 48 venación de las alas anterior y posterior.

297

Gayana Zool. 55(4), 1991

PATRÓN DE COLOR DE LAS ALAS POSTERIORES (fig. 67): Su-

perficie dorsal y ventral de color rosado moreno

más oscuro hacia el margen externo y más claro

hacia la región basal. En la superficie ventral es

distinguible la mancha discal, a la forma de un

punto castaño oscuro. Lóbulo similar en color a

la superficie alar.

TAGMA ABDOMINAL (fig. 67): Superficie dorsal verde-

amarillenta con escamas oscuras en el límite de

cada segmento. Superficie ventral rosado moreno

con escamas oscuras en los límites de los segmen-

tos. Pigidio con escamas piliformes amarillentas.

GENITALIA DEL MACHO (figs. 46 y 47): Uncus subtrian-

gular, alargado, terminado en una punta aguda,

en longitud sólo alcanza 1/3 de la longitud de las

valvas, gnathos ausente; socius ausente; valvas 2

veces más largas que su ancho máximo, mucho

más estrechas en el tercio apical, en el ápice lleva

una hendidura poco profunda; sacculus normal;

yuxta cuadrangular con una proyección medial

posterior bífida; saccus subcuadrangular. Aede-

agus subigual en largo a las valvas; ductus semi-

nalis emerge del tercio anterior de la funda; vesi-

ca armada por un conjunto de espinas.

EXPANSIÓN ALAR NEOTIPO: 25 mm.

DESCRIPCIÓN DE La HEMBRA (fig. 68): Similar al macho,

pero difiere en: las alas posteriores no llevan lóbu-

lo y poseen una sola vena anal (A) (fig. 51). Fé-

mur posterior sin un penacho de pelos en el ápice

interno.

GENITALIA DE LA HEMBRA (figs. 49 y 50): Bursa copu-

latrix globosa a ovoide, membranosa; ductus bur-

sae 1/3 más corto que la bursa, 4 veces más largo

que ancho; ductus seminalis emerge del límite

posterior de la bursa; cestum ocupa 1/3 de la lon-

gitud del ductus; colliculum mucho más ancho

que largo (4 veces mayor). Apófisis posteriores 2

veces más largas que las anteriores.

EXPANSION ALAR DE LA HEMBRA: 32 MM.

PerioDO DE vueLo: Entre el 8 de diciembre a marzo.

DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA: Purema (Concepción) (36"

26'S) a Quellón (Chiloé) (43% 07'S).

FiGs. 49-51. Genitalia y venación alar de la hembra de Triptiloides laeta (Philippi) n. comb.: Figs. 49 y 50 genitalia en vista

ventro-lateral y dorso-lateral respectivamente y Fig. 51 venación de las alas anterior y posterior.

298

El complejo Rhopalodes: PARRa, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

FiGs. 52-56. Imagos en vista dorsal de: Fig. 52 Rhopalodes argentina Berg, macho (holotipo); Fig. 53 R. castniata Guenée,

hembra (holotipo); Figs. 54 y 55 Tomopteryx amoena Philippi, macho y hembra respectivamente; y Fig. 56 Triptila ibarrai

n. sp., macho (holotipo). El trazo indica 1 cm.

Gayana Zool. 55(4), 1991

FiGs. 57-62. Imagos en vista dorsal de: Figs. 57 y 58 Triptila septentrionalis n. sp., macho y hembra respectivamente; Figs.

59 y 60 T. virescens (Philippi), macho y hembra respectivamente; y Figs. 61 y 62 Triptiloides esmeralda (Bartlett-Calvert) n.

comb. macho y hembra respectivamente. El trazo indica 1 cm.

300

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

——— 67

FiGs. 63-68. Imagos en vista dorsal de: Figs. 63 y 64 Triptiloides fissa (Felder £« Rogenhofer) n. comb., macho y hembra

respectivamente; Figs. 65 y 66 T. krahmeri n. sp., macho y hembra respectivamente; y Figs. 67 y 68 T. laeta (Philippi) n.

comb., macho y hembra respectivamente. El trazo indica 1 cm.

301

Gayana Zool. 55(4), 1991

MATERIAL EXAMINADO

1 macho (Neotipo), Prov. Valdivia, Sto. Domingo, Valdivia-

CHILE, 8-12-82, E. Krahmer (MNHN); 4 machos, Prov.

Valdivia, Valdivia CHILE, 4-1-59, E. Krahmer (CK); 1

macho, Prov. Valdivia, Vald., CHILE, 9-1-59, E. Krahmer

(BMNH); 1 macho, Prov. Valdivia, Valdivia CHILE, 30-12-

58, E: Krahmer (MZUC); 1 macho, QUELLON, Chiloé, ene-

ro 1955, Vargas Coll. (MNHN); 1 macho, Valdivia, Col.

Paulsen (MNHN); 3 hembras, Valdivia, Col. Paulsen

(MNHN); 1 hembra, Prov. Valdivia, ValdiviaCHILE, 22-1-

59, E. Krahmer (CK); 1 hembra, Prov. Valdivia, Valdi., CHI-

LE, 16-1-59, E. Krahmer (CK); 1 hembra, Prov. Valdivia,

Valdivia- CHILE, 11-1-60, E. Krahmer (MZUC); 1 macho,

Prov. Valdivia, Valdivia-CHILE, 16-1-59, E. Krahmer

(MZUC); 1 hembra, Prov. Valdivia, Valdivia- CHILE, 11-1-

60, E. Krahmer (CK); 1 hembra, Prov. Valdivia, Valdivia-

CHILE, 11-1-60, E. Krahmer (CK); 1 macho, Punehue, Ene-

1896, Col. Paulsen (MNHN); 1] macho, Vald., 2.122

(MNHN); 1 macho, Quemchi, CHILOE, L.E. Peña, enero 52

(MZUC); 1 hembra, MAULLIN, 12-11-1943 (MZUC); 2

hembras, Termas de Río Blanco, Cautín

hembra, PUREMA, Concepción, 19-Dic.-1953, Coll, L.E.

Peña (MZUC).

OBSERVACIONES

Esta es la especie más llamativa del género, pues

posee colores vistosos que contrastan fuertemen-

te a diferencia de las otras especies. También po-

see el menor tamaño de la envergadura alar en re-

lación a sus congéneres.

La especie se distribuye a través del bosque

valdiviano, en donde el bosque de Fagáceas es de

notable interés.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

Aunque Guenée haya descrito el género Rhopa-

lodes sobre la base de una hembra, se ha manteni-

do a R. argentina dentro de este género debido a

que la venación del macho y de la hembra en las

alas posteriores es similar, a excepción de los ló-

bulos. Esto es reafirmado por lo planteado por

Dugdale (1980), donde los machos de la tribu

Trichopterygini mantienen o presentan deriva-

ciones de la venación alar de la hembra.

En cuanto a Rhopalodes mucosaria Berg,

1885, es una especie que no pertenece al género

en cuestión pues no presenta las características

del macho (lóbulo en las alas), por lo que se cree

pertenecería a alguno que probablemente sea de

la misma tribu, que como condición apomórfica

haya perdido el lóbulo.

3.57 (MZUC); 1

302

De Tomopteryx y Triptila se concluye que

son entidades taxonómicas válidas y que Philippi

solamente se equivocó al describir las especies:

Tomopteryx virescens y T. laeta, dado que la es-

pecie tipo del género (7. amoena) presenta carac-

terísticas en las alas posteriores del macho y la ge-

nitalia, completamente diferente a los géneros en

que otros autores y este trabajo han puesto a las

otras especies originalmente adjudicadas a To-

mopteryx.

Se crea un nuevo género (Triptiloides n.

gen.) para cuatro especies, fundamentalmente

por las características de la venación y el lóbulo

de las alas posteriores del macho, esto a pesar de

que dentro de él existen diferencias morfológicas

a nivel de las genitalias, principalmente de los

machos. Lo último se contradice con la tendencia

general del grupo, cual es que en cada género el

macho y la hembra mantienen constante un

patrón de genitalia, hecho que fácilmente se

comprueba en los géneros Tatosoma, Sauris,

Episteira y Tympanota de la región australiana y

oriental, como también ocurre para los géneros

neotropicales, tal como es el caso de Triptila. Sin

embargo, se considera que la estructura del lóbu-

lo entrega un carácter de alto valor taxonómico,

lo que permite considerar a este grupo de cuatro

especies dentro de un mismo género.

Para las especies Tomopteryx amoena, Rho-

palodes esmeralda y Tomopteryx laeta se crean

neotipos, pues la serie original de las respectivas

especies están desaparecidas.

En cuanto a la distribución de los taxa, sólo

se entrega en base a los datos que cada ejemplar

aportó a través de su etiqueta de colecta, lo cual

sugiere que la distribución de cada especie es

mucho más amplia que la entregada aquí, aspec-

to que indudablemente se deberá complementar

con un mayor esfuerzo de recolección en las zo-

nas estudiadas y adyacentes.

AGRADECIMIENTOS

Nuestros agradecimientos al proyecto 20.38.14

de la Dirección de Investigación de la Universi-

dad de Concepción, por el apoyo económico para

la realización de este trabajo.

A la cooperación y ayuda brindada por los

siguientes colegas e instituciones que han permi-

tido el estudio de los tipo y especímenes a su car-

go: Dr. Ariel Cammoseight y Mario Elgueta, del

El complejo Rhopalodes: PARRA, L.E. y C.P. SANTOS-SALAS

Museo Nacional de Historia Natural (MNHN);

Museo de Zoología de la Universidad de Concep-

ción (MZUC); Dr. Joél Minet, del Muséum Na-

tional d'Histoire Naturelle (MNHNP); Dr. Mal-

colm J. Scoble, del British Museum (BMNH); Dr.

Axel Bachmann, del Museo Argentino de Cien-

cias Naturales Bernardino Rivadavia (MBR). Al

Lic. H. Ibarra y Sr. E. Krahmer (CK) por el apor-

te de material, a los Sres. José Bustos y Rubén Se-

púlveda por las ilustraciones y fotografías del pre-

sente trabajo.

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Gayana Zool. 55(4): 305-389, 1991

ISSN 0016-531X

BRYOZOA MARINOS CHILENOS VIII: UNA SINTESIS

ZOOGEOGRAFICA CON CONSIDERACIONES SISTEMATICAS Y LA

DESCRIPCION DE DIEZ ESPECIES Y DOS GENEROS NUEVOS*

BRYOZOA MARINOS CHILENOS VIII: A ZOOGEOGRAPHICAL

SYNTHESIS WITH SYSTEMATIC COMMENTS AND THE

DESCRIPTION OF TWO NEW GENERA AND TEN NEW SPECIES

Hugo I. Moyano G.**

RESUMEN

Este estudio consta de cinco partes: un cuerpo principal de

naturaleza estrictamente zoogeográfica y cuatro addenda que

contienen descripciones de nuevos taxa, adiciones y discu-

siones.

La parte zoogeográfica incluye la lista de 470 especies de

Chile continental sudamericano, de Chile antártico y de Chi-

le oceánico. A ésta se añaden otras treinta especies entre

nuevas para la ciencia y nuevas para el país, totalizando unas

500. Para discernir el patrón zoogeográfico principal de esta

briozoofauna se usó un conjunto inicial de ca. 250 especies (al

no incluirse principalmente la fauna antártica) para compa-

rar segmentos de la plataforma continental chilena de 4 gra-

dos de latitud cada uno entre Arica y el Cabo de Hornos, más

algunas áreas subantárticas, la Peninsula Antártica, el Archi

piélago de Juan Fernández y la Isla de Pascua considerados

como un segmento más cada uno. En la discusión final se hi-

zo un análisis global usando las 470 especies de briozoos.

La comparación se realizó a través del uso de los índices

de similitud de Kulczinsky-2 y Czekanowsky, cuyos resulta-

dos convertidos en matrices permitieron la elaboración de

una decena de dendrogramas. El estudio de éstos confirma la

existencia de las siguientes provincias briozoogeográficas:

Antártica, península y antártica oriental; Magallánica, cono-

* Una primera versión restringida de este trabajo se pre-

sentó en el IX Congreso Latinoamericano de Zoología, Are-

quipa, Perú, 9-15/10/1983.

** Depto. de Zoología, Universidad de Concepción, Ca-

silla 2407, Concepción, Chile.

305

sur de América del Sur desde los 40-42" S hasta el área del

Cabo de Hornos más las islas Malvinas; Chilena, costa chile-

na sudamericana al norte de los 40%-42% S que probalemente

se prolongue hasta el norte del Perú; Fernandense, los archi-

piélagos de Juan Fernández y de Las Desventuradas; Pas-

cuense, Isla de Pascua y probablemente Sala y Gómez y Ba-

tial Pacífico-oriental-austral, talud frente a Chile continental

al norte de los 42% S.

En los tres primeros apéndices se describen los siguientes

taxones nuevos: Klugerella gen. n., Filaguria gen. n.,

Aplousina grandipora sp. n., Callopora nazcae sp. n., “Celle-

pora” aliena sp. n., Ellisina profunda sp. n., Hippothyris

austrinus sp. n., Klugerella gordoni sp. n., Pachyegis

iquiquensis sp. n., “Porina” arcana sp. n., Rhamphonotus

bathyalis sp. n. y Smittina chilensis sp. n. Con excepción de

los géneros, todas las especies nuevas pertenecen al talud y se

encuentran entre los 300 y los 1.800 m de profundidad. A es-

te conjunto se añaden siete especies de ciclostomados (Moya-

no, 1991a), cinco de las cuales son nuevas incluyendo tres gé-

neros nuevos. Todo el conjunto marcado por un altísimo en-

demismo origina la Provincia Batial Pacífico-oriental-austral.

Al describir los géneros Klugerella gen. n. y Filaguria

gen. n. se discute el concepto de Cribrimorfo. Sobre una base

estructural se distinguen los siguientes siete grupos «cribri-

morfos», reduciéndose tentativamente el taxón CRIBRI-

MORPHA a los dos primeros: Cribrimorfos pelmatíferos,

Cribrimorfos apelmatíferos, Cribrimorfos umbonuloides,

Aracnopusiomorfos, Catenicelimorfos, Bifaxariomorfos y

Seudocribrimorfos. Los verdaderos cribrimorfos son aquellos

que poseen un pericisto formado por costillas cilíndricas o

aplastadas carentes de una articulación basal.

PALABRAS CLAVES: Bryozoa, Zoogeografía, Sistemática, An-

tártica, Juan Fernández, Isla de Pascua, Pacífico suroriental,

nuevos géneros y especies.

Gayana Zool. 55(4), 1991

ABSTRACT

This study consists of five parts: the principal one is strictly

zoogeographic and the four addenda deal with description of

new taxa, faunal additions and taxonomic discussions.

The zoogeographical part includes a taxonomic list

containing more than 470 bryozoan species from the

southamerican, antarctic and oceanic Chilean territories.

This figure reaches up to ca. 500 with the addition of new

species and new records reported in the addenda. In order to

reveal the zoogeographic pattern of this bryozoan fauna,

there were used ca. 250 species (by exclusion of the antarctic

and some others from the oceanic islands) to compare

zoogeographycally 4% Lat. segments of the Chilean

continental shelf from Arica (18% S) to Cape Horn (56” S),

plus subantarctic areas, the Antarctic peninsula; Juan

Fernández archipelago, and Easter Island, considered the

latter as one segment each. In the final discussion a global

analysis was carried out using the 470 bryozoan species.

The Kulczinsky-2 and Czekanowsky similitude indexes

were used to make the zoogeographical comparisons and the

results converted into matrix and dendrograms. On the base

of these results the followingd zoogeographical provinces are

proposed: Antarctic, Antarctic peninsula and Eastern

Antarctica; Magellanic, southernmost part of South America

from 40% S - 42? S to the Cape Horn area and the Falkland

islands; Chilean, Chilean coast 40% S - 42” S to the north,

probably including the Peruvian coast; Juan Fernández,

Juan Fernández and Las Desventuradas archipelagos; Easter

INTRODUCCION

Chile puede dividirse geográficamente en cuatro

partes O áreas ampliamente separadas entre sí:

Sudamericana, Antártica, Insular Pacífica Orien-

tal (Islas de Juan Fernández, San Félix y San

Ambrosio) e Insular Pacífica Occidental (Islas de

Pascua y Sala y Gómez). Cada una de ellas está

delimitada por condiciones geográficas y oOce-

anográficas tales —Convergencia Antártica,

Corriente de Humboldt, aguas subtropicales del

Pacífico Sur y gran aislamiento geográfico res-

pectivamente— que las hacen suponer a priori,

como asiento de unidades faunísticas separadas y

por ende como provincias zoogeográficas distin-

tas. Esta suposición está avalada por numerosos

trabajos pasados y recientes (Ekman, 1953,

Briggs, 1974; Newmann y Foster, 1983).

De las cuatro, la porción sudamericana ha

sido dividida en dos o tres provincias zoogeográfi-

cas por diferentes investigadores, que se han ba-

sado en la distribución de conjuntos faunísticos

amplios o restringidos a un grupo particular. Co-

múnmente se ha distinguido una fauna

temperado-cálida que comenzando aproximada-

306

Island, Easter Island and probably Sala y Gómez island;

South Eastern Pacific Bathyal, continental slope in front of

central Chile from 42" S to the north.

The following new taxa are described in the first three

addenda: Klugerella n. gen., Filaguria, n. gen., Aplousina

grandipora n. sp., Callopora nazcae n. sp.. “Cellepora” aliena

n. sp., Ellisina profunda n. sp., Hippothyris austrinus N. Sp.,

Klugerella gordoni sp. n., Pachyegis iquiquensis N. Sp.,

“Porina” arcana n. sp., Rhamphonotus bathyalis n. sp. and

Smittina chilensis n. sp. Excepting the new genera, all new

species were obtained in the slope between 300 m and 1800 m

depth. To these should be added another set made up of

seven cyclostomatous species (Moyano, 199la), containing

five new species and three new genera. All these species and

others already described represent a highly endemic fauna

and characterize the South Eastern Pacific Bathyal province.

In describing the new cribrimorph genera Klugerella n.

gen., and Filaguria n. gen., a general discussion of the taxon

Cribrimorpha is provided. On a structural base seven

«cribrimorph» groups are distinguished: Pelmatiferan

Cribrimorpha, Apelmatiferan Cribrimorpha,

Umbonuloidean Cribrimorpha, Arachnopusiomorpha,

Catenicellimorpha, Bifaxariomorpha and

Pseudocribrimorpha. True Cribrimorpha are the first two

which have a pericyst made of flattened or cylindrical ribs

(spines) lacking a basal joint.

KeYworDs: Bryozoa, Zoogeography, Antarctica, Juan

Fernández archipelago, Easter Island, South Eastern Pacific,

New genera and species.

mente donde termina septentrionalmente la

corriente de Humboldt, continúa a lo largo de la

costa peruana llegando hasta un punto entre Val-

paraíso y Chiloé. Forbes (1856) hacía llegar la

fauna peruana hasta la latitud de Concepción.

Ekman (1953) prolonga la extensión de la fauna

peruano-chilena hasta Chiloé, conclusión a la

que también ha llegado Briggs (1974) después de

analizar todas las informaciones acumuladas du-

rante más de un siglo después de Forbes. Varios

autores basándose en Crustacea Decapoda

(Rathbun, 1910; Haig, 1955; Garth, 1957), Aste-

roidea (Madsen, 1956), Asteroidea y Echinoidea

(Bernasconi, 1964), Pisces (Norman, 1937), Pori-

fera Demospongiae (Desqueyroux y Moyano,

1987) señalan al extremo norte de la Isla de Chi-

loé como el límite entre las faunas Peruano-

Chilena y Magallánica. Otro grupo de autores

distingue una zona intermedia con rango de pro-

vincia entre esas dos áreas faunísticas mayores: la

provincia o región Centro-Chilena entre los 27-

30% S y los 40-42% S. Esta posición es avalada

mediante el plancton (Balech, 1954), Pelecypoda

(Soot-Ryen, 1959), Polychaeta, y Ostracoda

(Hartman-Schróder y Hartmann, 1962). Una po-

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

sición algo diferente lleva a Stuardo (1964) a dis-

tinguir sobre la base de Mollusca una zona de

transición entre los 37% 37'S y los 42% S; a Cas-

tillo (1968) a diferenciar una zona semejante

entre Talcahuano y Valdivia (37% S-40* S) al mo-

nografiar los ofiuroídeos chilenos. Y a algo sim:

lar llega Mann (1954) cuando señala la existencia

de peces de origen septentrional que llegan hasta

Talcahuano y de otros subantárticos que suben

hasta esa localidad. Semenov (1982) basándose

en poliquetos (333 spp.), bivalvos taxodontos y

disodontos (119 spp.), gastrópodos fisurélidos (42

Spp.), crustáceos: isópodos (133 spp.), decápodos

(619 spp.), estomatópodos (42 spp.); pantópodos

(54 spp.); braquiópodos (14 spp.); asteroídeos (85

spp.); equinoídeos (38 spp.) y otros, propone una

zoogeografía marina de todo el rededor del conti-

nente sudamericano en la que la costa chilena

queda dividida en 9 divisiones principales de ran-

go entre región y subprovincia.

La mayoría de los autores encuentra un lími-

te entre las faunas de aguas temperado-cálidas y

temperado-+frías hacia los 40% S-42% S (Briggs,

1974). Al sur de ese límite se extiende la región o

provincia Magallánica (Rathbun, 1910; Balech,

1954; Knox, 1960), considerada como una uni-

dad (Ekman, 1953; Briggs, 1974) dividida en dos

(Viviani, 1969; Desqueyroux y Moyano, 1987) o

en tres zonas (Soot-Ryen, 1959). Esta región con-

tinúa por el Atlántico Sur hasta cerca de la de-

sembocadura del Río de La Plata (Briggs, 1974,

Moyano, 1982b) y hasta el archipiélago de Ker-

guelen si se toman en cuenta los briozoos (Moya-

no, 1982a).

Los briozoos han servido a nivel mundial pa-

ra establecer regiones o límites zoogeográficos, ya

sea solos o conjuntamente con otros invertebra-

dos. Okada y Mawatari, 1956 (Fide Schopf,

1978) distinguen provincias briozoológicas en el

Indopacífico y Pacífico Nororiental; Soule (1963)

caracterizó zoogeográficamente al Golfo de Cali-

fornia y Soule y Soule (1979) establecen generali-

dades sobre la evolución y zoogeografía de los

briozoos del Pacífico Sur. Moyano (1982b) distin-

guió varias provincias briozoogeográficas alrede-

dor de América del Sur. Hastings (1943) y

Androsova (1968) sobre la base de briozoos celu-

larinos y ciclostomados, respectivamente, delimi-

taron áreas antárticas y subantárticas; D'Hondt

(1979) caracterizó al sector Indico del Océano

Austral, Hayward (1980) al Atlántico Sur y

López-Gappa y Lichtschein (1988) al mar argen-

307

tino. Brown (1952) utilizó los briozoos fósiles de

Nueva Zelanda para individualizarla y compa-

rarla con Australia y áreas subantárticas, inclu-

yendo el extremo sur de Sudamérica. Silén

(1951), D'Hondt (1978, 1981, 1982, 1983);

d'Hondt y Schopf (1984) y Hayward (1981) han

producido importantes contribuciones sobre la

distribución de briozoos en las grandes profundi-

dades del Océano Mundial.

Schopf (1978), en un apéndice a su trabajo

sobre provincias-diversidad-tiempo geológico,

propuso 23 provincias briozoológicas a nivel

mundial que incluyen 5.900 especies. Seguida-

mente Schopf, Fisher y Smith (1979) distinguen

32 provincias sobre la base de la distribución de

briozoos, bivalvos, corales y foraminíferos. En es-

te esquema, casi todo el territorio chileno es

incluido en una provincia chilena, que se extien-

de desde Guayaquil hasta el Estrecho de Ma-

gallanes. La Tierra del Fuego, las islas Malvinas y

la costa argentina adyacente son incluidas en la

provincia Falkland. Esta proposición zoOgeográ-

fica no es avalada por la distribución de los fora-

miníferos y de los briozoos a ambos lados del co-

no sur de América del Sur (Moyano, 1982a y Za-

pata, 1987, respectivamente).

La briozoofauna chilena —aunque parcial-

mente conocida— permitió a Viviani (1969) deli-

mitar cuatro provincias entre Arica y Magalla-

nes: peruana, chilena, norpatagónica y surpata-

gónica. Para esto sólo utilizó Bryozoa (Entoproc-

ta y Ectoprocta) litorales. Con el fin de confirmar

y completar el esquema de Viviani, Moyano

(1973) dio a conocer parte de la hasta entonces

completamente desconocida briozoofauna de la

Isla de Pascua y definió recientemente (1982b) la

región magallánica desde el punto de vista

briozoogeográfico. Con posterioridad (Moyano,

1983, 1985a, 1987) se han añadido nuevos datos

sobre los briozoos de Juan Fernández y Pascua,

lo que lleva a reevaluar sus características zOOge-

ográficas. La proximidad de la Antártica al extre-

mo sur de América del Sur y a la provincia zoOge-

ográfica magallánica revela conexiones entre las

faunas de ambos sectores ya previamente estu-

diada por el autor (Moyano, 1966, 1978, 1985b,

1986, 1987, 1989) y autores extranjeros (Has-

tings, 1943, Borg, 1944, d'Hondt y Redier, 1977;

López-Gappa, 1978; Hayward, 1988; Hayward y

Taylor, 1984; Hayward y Ryland, 1990; Hay-

ward y Thorpe, 1987, 1988a, 1988b, 1988c,

1988d, 1989a, 1989b, 1990).

Gayana Zool. 55(4), 1991

Esta contribución tiene entonces por objeto:

a) reevaluar la imagen zoogeográfica de Chile a

través de sus briozoofaunas en una apreciación

de conjunto de lo conocido más los nuevos datos

especialmente de la Antártica y del talud de Chile

central y norte; b) describir taxones nuevos para

la ciencia; c) discutir el concepto de cribrimorfo,

y d) dar a conocer toda la briozoofauna chilena

actualizada a 1991 a través de las adiciones

bibliográficas más recientes.

MATERIALES Y METODOS

Las informaciones que se han usado en este tra-

bajo fueron obtenidas de: a) trabajos antiguos y

recientes del área magallánica y de las regiones

subantártica y antártica, usados sólo regional-

mente con anterioridad (Hastings, 1944; Andro-

sova, 1969; Moyano, 1982b); b) de la monografía

de Viviani (1969); c) de los trabajos de Osburn

(1950, 1952, 1953) sobre los briozoos presentes

entre Perú y Alaska; d) del trabajo de Moyano,

1983 como fuente principal, y e) de informa-

ciones nuevas y recientes publicadas (Moyano

1985, 1986, 1987, 1989, 1991a y b) y no publica-

das por el autor sobre las briozoofaunas de Juan

Fernández, Pascua, Antártica, Estrecho de Ma-

gallanes y Chile Central (ver Tablas I, Il y III.

( y

“GANT )) : do

/ y £

FIG. 1. Hemisferio Sur en vista Polar, sus continentes, islas

principales y corrientes marinas. AFR = Africa; ANT =

Antártica; AUS = Australia; SAM = Sudamérica; F = Juan

Fernández; P = Isla de Pascua; K = Kerguelen; A = penín-

sula antártica; T = Tristan da Cunha; Z = Nueva Zelanda;

ch corriente de Humboldt; se = corriente surecuatorial;

do = deriva de los vientos del oeste; m = corriente de las

Malvinas; ca convergencia antártica; b = corriente de

Bengela; e = arco de Escocia.

308

Para todos los análisis se tomó en cuenta la

briozoofauna de las plataformas continentales, es

decir, desde la zona de las mareas hasta los 200

metros de profundidad de las diferentes áreas

continentales e insulares en que se halla la brioo-

fauna chilena (Fig. 1). A la lista total de especies

que aparece en Moyano (1983) se han añadido

los nuevos hallazgos más todas las especies cono-

cidas presentes a lo largo de la península Antárti-

ca entre los paralelos 53% S y 902 S, actualizadas

nomenclaturalmente de acuerdo a trabajos re-

cientes (Hayward et Thorpe, 1988a, b, c, d;

1989a, b, 1990). Se toman en cuenta todas las es-

pecies independientemente de que tengan un ran-

go de distribución estrecho o amplio y de que ha-

yan sido recolectadas una o más veces. Para la

agrupación de localidades a lo largo de la costa

chilena en conjuntos de nivel provincial se utili-

zaron los valores de los índices usados, y siempre

que tuvieran un endemismo superior al 10% de

acuerdo a Briggs, 1974.

La mayoría de los análisis se basan en una

lista inicial de 267 especies (que con las adiciones

_2 estos últimos años ha subido a 300) de Bryo-

zoa presentes entre Arica y Magallanes más

aquéllos de las islas de Juan Fernández y Pascua

señalada más arriba que aparecen en Moyano

(1983). Y para la evaluación final (en especial pa-

ra la evaluación zoogeográfica de Pascua, Juan

Fernández y de la Antártica Chilena) se utiliza-

ron las especies que aparecen en la Tabla I más

todas las presentes a lo largo de la península an-

tártica (ver Tabla Il.

Se dividió arbitrariamente la costa chilena

en segmentos de 4 grados de latitud, con excep-

ción del segmento décimo que se extendió entre

los 46% S y 522 S por tratarse de un área de con-

diciones homogénea y por estar muy muestreada.

Al archipiélago de Juan Fernández, a la Isla de

Pascua, a la Antártica Chilena y a otras localida-

des alejadas de las costas chilenas sudamericanas,

pero con especies presentes en éstas, se les consi-

deró como unidades de área independientes, pero

equivalentes a los segmentos aludidos más arriba.

La afinidad zoogeográfica fue evaluada mediante

los índices de Kulczinsky-2 y Czekanowsky, a

través de las siguienes fórmulas.

TaTI + T2)

x 100

2 (TI x T2)

Kulezinsky-2 i= Czekanowsky

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

en los que TC = número de especies comunes

entre dos áreas; Tl = número de especies del

área 1; T2 = número de especies del área 2; € =

número de especies comunes a dos áreas, y N =

número total de especies de las dos áreas compa-

radas. Con los datos de afinidad entre los diver-

sos segmentos se construyeron diversas matrices

de afinidad, que no se incluyen en el trabajo por

razones de espacio, pero cuya estructura se puede

ver en Moyano (1982, 1983). A partir de ellas se

realizarog manualmente los dendrogramas que se

presentan. Estos fueron confeccionados siguien-

do el método de la media no ponderada (Crisci y

López, 1983). Estos reemplazan a las matrices

por su facilidad de interpretación.

Cuatro conjuntos briozoofaunísticos chile-

nos principales fueron analizados mediante el ín-

dice de Kulezinsky-2. El primero corresponde a

52 especies de ectoproctos litorales recolectados y

estudiados por Viviani entre Arica (18% 59'S) y

Quellón (43% 08"5); el segundo está constituido

por 195 especies presentes alrededor del extremo

sur de América del Sur (Moyano 1982); el tercero

correspondiente a las 267 especies que según Mo-

yano (1983) estaban presentes a esa fecha en to-

dos los territorios chilenos con excepción de la

Antártica; y el cuarto que incluye las más de 460

especies de la Tabla Í al incluir las que se hallan

en los mares que rodean al territorio antártico

chileno. El tercer conjunto faunístico fue subdi-

vidido en tres, una matriz con todas las especies,

otra con solo 234 al excluirse Juan Fernández y

Pascua y una tercera con sólo 216 al excluirse del

análisis 18 especies de muy amplia distribución

geográfica. Y para obtener una imagen total de

toda la briozoofauna chilena se añaden recentísi-

mos descubrimientos de faunas del talud (ver

Tabla III que se comparan con la fauna de Chile

central.

TABLA 1. Especies de Bryozoa nuevas para la fauna chilena señaladas con posterioridad a 1983(1), exceptuadas las del ta-

lud(2).

1985

1. Catadysis pygmaeum Moyano, 1985. Chiloé

2. Orthoporidra stenorhyncha Moyano, 1985. Península Antártica

3. Orthoporidra brachyrhyncha Moyano, 1985. Península Antártica

4. Galeopsis juanfernandensis Moyano, 1985. Islas Juan Fernández

S. Galeopsis megaporus Moyano, 1985. Islas Juan Fernández

6. Celleporina asymmetrica Moyano, 1985. Islas Juan Fernández

7. Andreella polypora Moyano, 1985. Chiloé

8. Fenestrulina horrida Moyano, 1985. Archipiélago Madre de Dios

9. Chirizopora brongniarti (Audouin, 1826). Islas Juan Fernández

10. Micropora mortenseni Livingstone, 1929.

.11. Fenestrulina pulchra Gordon, 1984.

1986

12. Celleporella (C.) retiformis Moyano, 1986.

13. Celleporella (N.) vivianii Moyano, 1986.

14. Celleporella (C.) uberrima Moyano, 1986.

15. Celleporella (A.) muricata (Busk, 1876).

1987 y 1988 (Isla de Pascua, /n litteris)

16. Bugula dentata Lamouroux

17. Bugula scaphoides Kirkpatrick

18. Brettiella ovicellata Gordon

19. Cellaria sp. n. (Como Cellaria sp., Moyano, 1983)

20. Celleporina sp.

21. Cribrilaria Sp. n.

22. Arthropoma cecilii (Audouin)

23. Scrupocellaria maderensis Busk (Como Scrupocellaria sp., Moyano, 1983).

24. Thalamoporella gothica indica Hincks

25. Crisina radians Lamarck

26. Diastopora sp.n.

27. Tubulipora Sp. N.

28. Parasmittina sp. 1

29. Parasmittina sp. 2

30. Idmidronea sp.

1983-89 (Antárticas y magallánicas)

31. Adelascopora secunda Hayward y Thorpe

Islas Juan Fernández

Islas Juan Fernández.

Antofagasta

Chile Central

Magallanes

Islas Juan Fernández

Isla de Pascua

Península Antártica

Gayana Zool. 55(4), 1991

TABLA 1. (continuación)

32. Adelascopora jeqolga Moyano

33. Adeonella fuegensis (Busk)

34. Adeonella meridionalis Hayward

35. Adeonella patagonica Hayward

36. Fenestrulina exigua (Waters)

37. Microporella stenoporta Hayward y Taylor

38. Smittoidea pugiuncula Hayward 8: Thorpe

39. Escharella watersi Hayward «€ Thorpe

40. Escharella mamillata Hayward 8: Thorpe

41. Lacerna watersi Hayward 8 Thorpe

42. Fenestrulina antarctica Hayward « Thorpe

43. Amphiblestrum familiaris Hayward 8 Thorpe

44. — Xylochotridens rangifer Hayward $ Thorpe

45. Stomhypselosaria watersi Hayward £ Thorpe

46. Paracellaria calveti (1'Hondt)

47. Paracellaria elephantina Hayward £ Thorpe

48. Astochoporella cassidula Hayward y Thorpe

49. Isoschizoporella secunda Hayward y Taylor

50. Eminooecia carsonae (Rogick)

51. Arachnopusia columnaris Hayward y Thorpe

52. Arachnopusia decipiens Hayward y Thorpe

53. Arachnopusia ferox Hayward y Thorpe

54. Arachnopusia tubula Hayward y Thorpe

55. Arachnopusia discors Hayward y Thorpe

56. Arachnopusia valligera Hayward y Thorpe

57. Hemismittoidea hexaspinosa (Uttley 8: Bullivant)

1991

58. Arachnopusia paucivanna Moyano

59. Microporella personata (Busk)

(1) Otras especies nuevas para la fauna Chilena aparecen en los Addenda [11 y IV

(2) Las especies del talud aparecen en Moyano 1991 y en el Addendum 1).

Las microfotografías al Microscopio

Electrónico de Barrido (MEB) de los addenda 1,

Il y HI fueron obtenidas en el Laboratorio de

Microscopía Electrónica de la Universidad de

Concepción. Las muestras fueron hervidas en hi-

poclorito de Sodio comercial diluido, lavadas con

agua corriente, secadas de alcohol etílico 96% y

sombreadas con oro-platino.

Todas las láminas con fotográficas al MEB

(SEM) se componen de 6 fotos que se identifican

de la siguiente manera:

Al = arriba a la izquierda; AD = arriba a la derecha

MI = al medio a la izquierda; MD al medio a la derecha

ABI = abajo a la izquierda, ABD = abajo a la derecha.

mob

Los cálculos de diversidad Zoarial y polimorfismo

(Tablas Ilb y Ilc) se realizaron según métodos y

criterios de Moyano, 1979, 1982a y b, 1983.

RESULTADOS

En lo que sigue, se hará primeramente una eva-

luación general de la brizoofauna chilena en tér-

310

Península Antártica

Magallanes

Península Antártica

Peninsula Antártica

Península Antártica

Cerca del Cabo de Hornos

Magallanes

Chile Central

minos de endemismo, diversidad Zoarial, polimor-

fismo y representación de los tres órdenes del Re-

ciente: Ctenostomata, Cyclostomata y Cheilosto-

mata. Seguidamente se pasará revista a la distri-

bución de los briozoos subantárticos, magalláni-

cos, del norte y centro de Chile tanto de la plata-

forma continental como del talud, y a los de los

territorios insulares de Juan Fernández y Pascua

a través del análisis de dendrogramas basados en

listas faunísticas.

Toda la briozoofauna chilena aparece en la

Tabla II que se expone seguidamente En ésta se

ha procurado actualizar lo más posible la no-

menclatura a 1991, tanto a través de la revisión

de los últimos trabajos de Gordon (1984-1989),

de Hayward et al. (1980-1990) y del presente

autor (Moyano, 1991a y 1991b) como de la inclu-

sión de nuevos registros del autor después de su

participación en la Primera Expedición Italiana

al Estrecho de Magallanes, febrero-marzo de

1991.

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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Gayana Zool. 55(4), 1991

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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313

Gayana Zool. 55(4), 1991

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

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Gayana Zool. 55(4), 1991

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328

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

I. CARACTERÍSTICAS GENERALES DE

LAS BRIOZOOFAUNAS CHILENAS

De la Tabla II se desprende que el número total

de especies alcanza a no menos de 470, número

que será acrecentado con las adiciones de los ad-

denda de este trabajo y de otros recién publica-

dos (Moyano, 1991a, b). Las Tablas lla, IIb, IIc y

Ild que complementan y explicitan la Tabla II

ofrecen el panorama total de las briozoofaunas

chilenas.

El endemismo a nivel específico de la briozo-

ofauna chilena como un todo (Tabla lla) alcanza

a más de un 80%, pero este valor no es igual para

cada fauna individual. Así la fauna antártica po-

see el mayor valor, casi 84%. Este valor decrece

a casi 55%, 38%, 35% y 33% para los briozoos

magallánicos, de centro y norte de Chile, de Juan:

Fernández y Pascua, respectivamente. Estos va-

lores vuelven a subir al considerar el casi 67% de

la fauna del talud. Lo anterior significa la extre-

ma originalidad y separación de la briozoofauna

antártica seguida en este sentido por la magallá-

nica. El muy alto valor del endemismo de toda la

briozoofauna chilena se debe entonces a la inci-

dencia de las especies de la península antártica y

de Magallanes que hacen tres cuartos de toda la

fauna considerada. El grave desconocimiento de

la briozoofauna del Pacífico Oriental entre el

Golfo de Panamá y los 18” S impide saber en qué

extensión se prolonga la fauna del norte de Chile.

Debido a esto el altísimo valor del endemismo se-

ñnalado más arriba debe ser considerado proviso-

rio en la casi seguridad de una continuidad de las

briozoofaunas temperadas desde el norte de Chi-

le hasta Ecuador. Igualmente el endemismo de

los briozoos de Pascua y Juan Fernández puede

ser menor cuando se hayan determinado todas

las especies consideradas hasta este momento a

nivel genérico y que si fueron tomadas en cuenta

para los valores antes señalados.

La diversidad zoarial (Tabla IIb) medida a

través del índice H” de Shanon-Wiener (Moyano,

1979, 1982, 1983) expresada como E (H'/H'máx.

100) alcanza los valores más altos en la Antártica

(76,80%) y la Isla de Pascua (76,45%) y el menor

(43,61%) en la costa chilena al norte del Canal de

Chacao (421 S). Si, en cambio, se toma en cuenta

sólo la briozoofauna endémica de la península

antártica, la diversidad Zoarial llega al 80%. Esto

significa que la briozoofauna de la costa chilena

central y norte está ampliamente dominada por

una sola forma zoarial, la incrustante, a diferen-

cia de la Antártica y la Isla de Pascua, donde ade-

más de la incrustante predominan otras formas

zoariales.

La cantidad de avicularias y/o vibracularias

por especie, O a 3, dentro del orden Cheilostoma-

ta (Tabla Ilc), computadas para cada una de las

briozoofaunas permite caracterizarlas igualmen-

te. Su presencia, número y variedad indican divi-

sión del trabajo y especialización a nivel colonial

y desplazamiento en el sentido K del continuum

r-K (Schopf, 1973). El número de especies sin avi-

cularias ni vibracularias sube del 40% en la

fauna de la plataforma continental al norte del

Canal de Chacao y a más del 25% en Magallanes

y Juan Fernández. Si se consideran especies con

dos o más avicularias y/o vibracularias los mayo-

res valores porcentuales corresponden a las

faunas de Magallanes y de la Isla de Pascua; y si

se consideran 3 o más, es decir, la mayor espe-

cialización, la briozoofauna antártica cuadriplica

los valores de las otras briozoofaunas. El valor y

significado tanto del polimorfismo como de la di-

versidad zoarial como un índice de estabilidad

ambiental ya ha sido discutido por Moyano

(1975, 1978, 1979, 1982, 1983).

La proporción entre las especies de los tres

órdenes recientes de Bryozoa, Ctenostomata, Cy-

clostomata y Cheilostomata (Tabla Id), conside-

rando las 470 especies de la Tabla II, es aproxi-

madamente de 1:4:18 (1=21). Esto es, hay 4 ve-

ces más ciclostomos y 18 veces más queilostomos

que ctenostomos. Estas que varían a 0:1:2

(1=12) para la Isla de Pascua y a 0:1:3,3 (1 =7)

para las especies batiales indican la ausencia de

ctenostomados y la gran cantidad de ciclostoma-

dos. Para la Región Magallánica la proporción al-

canza a 1:4:10 (1=14) y para la Antártica

1:15:86 (1=2), revelando para la primera la pro-

porcionalmente gran cantidad de ctenostomados

y ciclostomados y para la última la absoluta pre-

dominancia de los queilostomados. Estos valores

varían a 1:7:77 (1=2) si sólo se computan las es-

pecies endémicas antárticas, ya que permanece

constante el número de ctenostomados, mientras

los ciclostomados descienden en más de un 50%

y los queilostomados en sólo un 15%. Todo lo

anterior significa que los ctenostomados son sólo

importantes entre Arica y el Cabo de Hornos,

que los ciclostomados aumentan su representa-

329

Gayana Zool. 55(4), 1991

ción desde Chile Centro-Norte y la Antártica a la

Región Magallánica, alcanzando la mayor repre-

TABLA lla. Endemismo de las briozoofaunas chilenas.

sentación proporcional en las islas oceánicas chi-

lenas.

BRIOZOOFAUNAS N(Spp.) Spp. no endémicas(%) Spp. endémicas(%)

Peninsula Antártica (todos) 203 33 (18,29) 170 (83,75)

Región Magallánica 196 89 (45,41) 107 (54,59)

Chile Centro-Norte 106 66 (62,26) 40 (37,73)

Islas Juan Fernández 43 28 (65,11) 15 (34,88)

Isla de Pascua 36 24 (66,66) 12 (33,33)

Batiales de Chile Centro-Norte 30 10 (33,33) 20 (66,66)

Todas las briozoofaunas chilenas 470 86 (18,30) 384 (81,70)

TABLA IIb. Diversidad zoarial de las briozoofaunas chilenas.

BRIOZOOFAUNAS Níspp.) N* Fz Hg H'máx. E(H/H'máx. 100)

Peninsula Antártica (todos) 203 10 2:55:12 3,3219 76,80

Península Antártica (endémicos) 170 10 2,6604 3,3219 80,09

Región Magallánica 196 10 1,8361 3,3219 55,27

Chile Centro-Norte 106 6 1,1272 2,5849 43.61

Islas de Juan Fernández 43 5 1,3336 2,3219 57,43

Isla de Pascua 36 5 17751 2,3219 76,45

Batiales de Chile Centro-Norte 30 4 1,3119 1,9999 65,60

Todo Chile 470 10 2,1797 3,3219 62,65

TABLA Ilc. Porcentajes de polimorfos (avicularias y/o vibracularias) en las especies chilenas del orden cheilostomata.

BRIOZOOFAUNAS Spp. Ninguno(%) Uno(%) Dos(%) Tres(%)

Península Antártica (todos) 171 38 (22,22) 77 (45,03) 34 (19,88) 22 (12,86)

Península Antártica (endémicos) 154 30 (20,13) 71 (46,10) 31 (20,13) 21 (13,64)

Región Magallánica 138 36 (26,09) 66 (47,83) 31 (22,46) 5( 3,62)

Chile Centro-Norte 87 36 (41,38) 43 (49,42) Si(0:5719) 3 ( 3,45)

Islas de Juan Fernández 31 8 (25,81) 15 (48,39) 6 (19,35) 2 ( 6,45)

Isla de Pascua 24 5 (20,83) 12 (50,00) 7 (29,17) >

Batiales de Chile Centro-Norte 23 5 (21,74) 16 (69,56) 2 ( 8,70)

Todo Chile 369 89 (24,12) 174 (47,15) 77 (20,87) 29 ( 7,86)

TABLA 1d. Proporción de bryozoa de los órdenes ctenostomata cyclostomata y cheilostomata en las briozoofaunas chile-

nas.

BRIOZOOFAUNAS Spp. CTE(%) CYC(%) CHEI(%) Proporcionalidad

Península Antártica (todos) 203 2 (0,98) 30 (14,78) 171 (84,24) 1:15:86 (1=2)

Peninsula Antártica (Endémicos) 170 2 (1,18) 14 ( 8,23) 154 (90,59) 1:7:77 (1=2)

Región Magallánica 196 14 (7,14) 43 (21,94) 139 (70,92) 1:3:10 (1=14)

Chile Centro-Norte 106 8 (7,55) 10 ( 9,43) 88 (83,02) 1:1:11 (1=8)

Islas de Juan Fernández 43 1 (2,32) 13 (30,23) 29 (67,44) 1:13:29 (1=1)

Isla de Pascua 36 0 () 12 33,33) 24 (66,66) 0:1:2 (1=12

Batiales de Chile Centro-Norte 30 0() 7 (23,33) 23 (76,66) 0:1:3 (1=7)

Todo Chile (lista de Tabla II) 470 21 (4,47) 80 (17,02) 369 (78,51) 1:4:18 (1=21)

330

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

II. BRYOZOA CYCLOSTOMATA

ANTÁRTICOS Y SUBANTÁRTICOS

Aunque los primeros ciclostomados subantárti-

cos fueron publicados en la primera y segunda

mitades del siglo pasado (D'Orbigny, 1841-1847;

Busk, 1886), sólo en el segundo cuarto del presen-

te siglo se tuvo una información global, válida

hasta el día de hoy (Borg, 1944). En ese trabajo se

trataron por primera vez en forma crítica las es-

pecies ya conocidas de los mares antárticos y su-

bantárticos, se describieron otras nuevas de géne-

ros y familias hasta entonces desconocidos. Este

trabajo de Borg de los briozoos de la Expedición

Antártica Sueca y el más reciente de Androsova

(1968) sobre losde las Expediciones Antárticas

Soviéticas, permiten el análisis zoogeográfico.

9 100%

Antártica 20% W - 40% E

Antártica 40% E - 100% E

Antártica 100% E - 160% E

Antártica 160% E - 140% W

Antártica 80% W - 20% W

Chile Austral

Costa patagónica, Malvinas

y Tierra del Fuego.

Arco de Escocia

Isla Príncipe Eduardo

Islas Kerguelen y Heard

Isla Tristan da Cunha

Islas Auckland

Antártica 140% W-80% W

FIG. 2. Dendrograma A de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2) basado en los briozoos ciclosto-

mados antárticos y subantárticos sensu Androsova, 1968.

331

Gayana Zool. 55(4), 1991

Androsova entrega la distribución de 113 es-

pecies y subespecies en 13 áreas continentales e

insulares alrededor de la Antártica y parte sur de

los continentes australes. Después de eliminar los

registros dudosos, con las 85 especies restantes se

construyó la matriz en que se basa el dendrogra-

ma A (Fig. 2). El examen de la matriz muestra

que el mayor número de especies comunes se

comparte entre el área magallánica y las costas

antárticas entre los 80% y 20% W y entre aquélla

y Kerguelen con 17 y 12 especies comunes com-

partidas respectivamente (Moyano, 1982a). El

dendrograma que aquí se presenta refleja la si-

tuación antes descrita, esto es, la clara vincula-

ción de las áreas antárticas y subantárticas a tra-

vés de los Bryozoa Cyclostomata: así al 40% de

afinidad aparecen unidos tres sectores del Antár-

tica Oriental; otros cuatro que incluyen al Mar

de Ross, la Península Antártica, Chile Austral y

la costa patagónica, las Islas Malvinas y la Tierra

del Fuego; las islas Kerguelen y Heard se juntan

a más de un 50% de afinidad con la del Príncipe

Eduardo, a las que se une a un 25% el Arco de

Escocia formando un tercer grupo: el cuarto con-

junto conformado por Tristán Da Cunha, las

islas Auckland y la costa antártica entre los 140%

W y los 80 W, se unen a un nivel inferior al

40%. En todos estos grupos con excepción del

primero se mezclan localidades antárticas y su-

bantárticas, confirmando la inexistencia de una

separación clara entre las faunas antárticas y su-

bantárticas de Bryozoa Cyclostomata.

La revisión individual de los diferentes taxo-

nes revela, sin embargo la existencia de endemis-

mos antárticos y subantárticos. La familia Ha-

tingsiidae y sus especies parecen estar confinadas

sólo a la Antártica, pues el registro más sep-

tentrional, en el Arco de Escocia, pertenece a

Hastingsia pygmaea (Borg, 1944). A nivel especí-

fico también aparecen como endémicas Domopo-

ra antarctica Borg y Hornera lasarevi Androso-

va. Como endémicas para la región subantártica

y especificamente para el área magallánica, apa-

recen las familias Calvetiidae y Pseudidmo-

neidae. Esta última sólo en la actualidad aparece

como endémica alrededor del cono sur sudameri-

cano, pues se han encontrado formas fósiles en

Australia del sur (MacGillivray, 1895). Este vín-

culo de las áreas sudaustraliana y neozelandesa

con la magallánica se manifiesta también a través

de la presencia en ellas de Liripora lineata (Mac-

Gillivray) y del género Heteropora con H. neoze-

332

lanica Busk y H. chilensis Moyano.

La amplia distribución de los Bryozoa Cy-

clostomata permite conectar incluso a la Antárti-

ca con los continentes australes a través de Neo-

fungella claviformis de la Península Antártica y

del Banco das Agulhas en Africa del Sur (Buge,

1977) y de Crisina radians de Australia, la Penín-

sula Antártica y la Isla de Pascua (aunque podría

tratarse de especies semejantes dentro del género

Crisina). Por otra parte, algunas especies como

Mecynoecia buski, Stomatopora eburnea y

Pseudidmonea fissurata, se extienden por el

Atlántico hasta la desembocadura del Río de La

Plata (Buge, 1979).

HI. BRYOZOA CHEILOSTOMATA CELLULARINA

ANTÁRTICOS Y SUBANTÁRTICOS

En 1943, Anna Hastings publicó los resultados

de sus estudios sobre los briozoos de las familias

Scrupocellariidae, Epistomiidae, Farcimina-

riidae, Bicellariellidae, Aeteidae y Scrupariidae

recolectados por los buques del Discovery Com-

mittee y de otras expediciones a las regiones an-

tárticas y subantárticas. Junto al estudio sistemá-

tico, esta autora añade datos de distribución de

acuerdo a las condiciones hidrológicas del Océ-

ano Austral. En su Tabla II y en el texto que la

acompaña enfatiza la estrecha relación existente

entre la situación de las Convergencias Antártica

y Subtropical y la distribución de los bri0ZOOs ce-

lularinos, de los que dice que se pueden encontrar

en una u otra región, pero no en ambas (Has-

tings, op. cit.: 482).

Para la confección del dendrograma B (Fig.

3) se han considerado 24 de las 26 localidades se-

ñaladas por Hastings, habiéndose eliminado la re-

ferente a las especies encontradas al norte de la

Convergencia Subtropical y aquélla referida a es-

pecies abisales. En este dendrograma se distin-

guen dos conjuntos principales al 40% de afini-

dad: uno formado por 10 áreas antárticas desde

la Tierra de Oates hasta las Islas Shetland del Sur y

que incluye todos los archipiélagos del Arco de

Escocia y el segundo constituido por 6 áreas que

incluyen la región magallánica y los archipiélagos

al norte de la Convergencia Antártica. En el

dendrograma la Isla Heard que está al sur de la

Convergencia Antártica se une sin embargo a

Kerguelen que se encuentra al norte de ella; esto

es confirmado por Hastings al analizar las espe-

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

cies que comparte la Isla Heard con otras islas ve-

cinas y con la Antártica. La Isla Bouvet muestra

una condición parecida a Heard en su relación

con la Convergencia Antártica, apareciendo liga-

da al grupo antártico por compartir 6 de sus 7 es-

pecies con el archipiélago de South Georgia y 5

con la costa antártica. Tristán da Cunha y

Gough aunque reunidas por más de un 65% de

afinidad se unen al grupo antártico sólo al 21% y

OO 203040550 60/7570

80 90

al subantártico al 10% a pesar de estar en el bor-

de de la convergencia subtropical en el Atlántico

Sur. Algo similar ocurre con otros dos grupos:

Chile y Juan Fernández reunidos con Fuera de la

Costa Patagónica, y el otro formado por Rocas

Shag y el AMar de Bellingshausen. Quizá el bajo

número de especies presentes en estas localidades.

sea la causa de su aparente situación anómala

dentro del dendrograma.

100%

Tierra de Oates

Tierras Reina María y

Guillermo Il. Antártica

Mar de Ross

Islas Orcadas del Sur

Archipiélago de Palmer

Isla Elefante

Isla Georgia del Sur

Tierra de Adelia

Islas Sandwich del Sur

Islas Shetland del Sur

Isla Bouvet

Isla Tristan da Cunha

Isla Gough

Chile y Juan Fernández

Fuera de la costa patagónica

Isla Heard

Islas Marion y Príncipe Eduardo

Islas Kerguelen

Islas Auckland y Campbell

Isla Posesión, Grupo Crozet

Región Magallánica

Plataforma patagónica

e islas Malvinas

Rocas Shag

Mar de Bellingshausen

e Isla Adelaida

FIG. 3. Dendrograma B de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2) basado en briozoos celularinos

antárticos y subantárticos según Hastings, 1943.

333

Gayana Zool. 55(4), 1991

Los Bryozoa Cellularina entonces, a diferen-

cia de los Cyclostomata, permiten separar las re-

giones antártica y subantártica, teniendo el área

Magallánica dentro de esta última, la mayor afi-

nidad con la plataforma patagónica y las islas

Malvinas. Este panorama zoogeográfico basado

en los datos de Hastings es en general válido, con

la salvedad de que muchas especies dadas por esa

autora para la Antártica Oriental y para el Mar

de Ross, han sido encontradas posteriormente a

lo largo de la Península Antártica (Rogick, 1965;

Moyano, 1966). Algunos de los taxa característi-

cos de las áreas comentadas son: los géneros

Camptoplites que comprende alrededor de 15 es-

pecies, la mayoría de las cuales se hallan por

dentro de la Convergencia Antártica, Menipea

netamente subantártico y Beania con grupos de

especies características a ambos lados de la Con-

vergencia. Algunas especies como Caberea dar-

wini se hallan, sin embargo, indistintamente a

ambos lados de la Convergencia.

IV. BRYOZOA DELA PENÍNSULA ANTÁRTICA

Rogick (1965) ha señalado la presencia de alrede-

dor de 321 especies en las aguas Antárticas y de

influencia Antártica, de las que las netamente an-

tárticas (endémicas) serían 179. Este número, pa-

ra toda la antártica, se ha acrecentado con la

descripción de muchas especies nuevas con poste-

rioridad a 1965 por Androsova (1968), Moyano

(1966, 1978, 1985b, 1986, 1987, 1989), dHondt

y Redier (1977); Hayward y Taylor (1984);

López-Gappa (1982, 1986); Hayward y Ryland,

(1990), Hayward y Thorpe (1987, 1988a, 1988b,

1988c, 1988d, 1989a, 1989b, 1990).

Según los datos de la Tabla Il, a lo largo de

la Península Antártica se han detectado no me-

nos de 200 especies, es decir un número casi simi-

lar al de Magallanes. Este número resulta princi-

palmente de los trabajos de Waters (1904), Cal-

vet (1909), Rogick (1965), Moyano (1978), Hay-

ward et al. (1987-1990). De este número 170 es-

pecies (83,75%) no se encuentran al norte de la

Convergencia Antártica, por lo que puede consi-

derárselas endémicas. Estas especies pueden ser

consideradas de distribución ampliamente antár-

tica y no sólo propias de la Península Antártica.

Así ya en 1968 Moyano al informar de la distri-

bución de 57 especies de Bryozoa recolectadas

durante la realización de la XIX Expedición An-

334

tártica Chilena (I del Instituto Antártico Chileno)

indicaba la existencia de 22 especies no señaladas

previamente para el archipiélago de las Shetland

del Sur. Todas esas especies habían sido descritas

de otras áreas de la Antártica inclusive de los sec-

tores “antipódicos” a la Península Antártica. En

este mismo sentido se constata que recientemen-

te Hayward y Taylor (1984) describieron Micro-

porella stenoporta del Mar de Ross, la que ha si-

do encontrada ahora en el Estrecho de Gerlache

al sur de las Shetland del Sur confirmando la

amplia distribución de los briozoos de la Penínsu-

la Antártica. Muy recientemente Hayward y

Ryland, 1990 y Hayward y Thorpe, 1990, descri-

bieron decenas de esmitínidos y microporélidos

antárticos y subantárticos que elevan aún más el

número de especies y el endemismo de estas áreas

(ver Addenda III y IV).

El endemismo briozoológico a nivel genéri-

co a lo largo de la Península Antártica es, sin em-

bargo, mucho menos marcado. Así, géneros pro-

piamente antárticos como Cellarinella, Camp-

toplites y Orthoporidra alcanzan hasta la provin-

cia magallánica estableciendo una conexión Zo-

ogeográfica. Igualmente otros como Ro-

mancheina muestran una vicariancia marcada al

presentar especies semejantes a uno y otro lado

de la Convergencia Antártica: R. labiosa en Ma-

gallanes y R. asymmetrica en la Península Antár-

tica. Un tercer tipo de géneros muestra tanto es-

pecies vicariantes como comunes a ambos lados

de la convergencia: tal el caso de Arachnopusia

con A. admiranda, y A. areolata en Magallanes o

más al norte, con A. aquilina y A. latiavicularis

en la Antártica, sirviendo de nexo entre ambos

conjuntos A. monoceros que se halla en uno y

otro lado (salvo estimaciones recientes de Hay-

ward y Thorpe, 1988a, que al describir varias es-

pecies nuevas de Arachnopusia rechazan la idea

de que A. monoceros esté a ambos lados de la

Convergencia). Un cuarto tipo de géneros está

representado poraquéllos de amplísima reparti-

ción geográfica como Smittina y géneros afines

que muestran series de especies vicariantes a am-

bos lados de la Convergencia Antártica entre

Magallanes y la Península Antártica y entre los

extremos de los continentes australes.

La comparación de la biozoofauna de la Pe-

nínsula Antártica, como un todo, con todas las

otras presentes en territorios chilenos se visualiza

en el dendrograma Mi; allí aparece completamen-

te desvinculada mostrando su independencia zoo-

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

geográfica, constituyendo una provincia briozoo-

lógica Antártica que concuerda con extensión y

situación con la de Briggs (1974).

V. BRYOZOA MAGALLÁNICOS Y SU EXTENSIÓN

GEOGRÁFICA

Desde el primer tercio del siglo XIX empezaron a

conocerse los briozoos magallánicos a través de

una serie de grandes expediciones oceanográficas

organizadas por los principales países europeos,

entre las que ha destacado la del Challenger

(Busk, 1884). Todos estos conocimientos fueron

sintetizados por Moyano (1982b). En esa revisión

se estudiaron 195 especies de briozoos (7 de las

cuales eran nuevas) desde los puntos de vista de

su distribución, diversidad zoarial y polimorfis-

mo. Allí se estableció también que la briozoo-

fauna magallánica se centra en los archipiélagos

magallánicos donde se hallan 171 de 195 especies

(entonces incluidas), que se extiende hacia la costa

patagónica argentina, a las islas de Tristan da

Cunha y Gough y que se proyecta en el trayecto

de la Deriva de los Vientos del Oeste hasta el

Archipiélago de Kerguelen en la parte más

austral del Océano Indico Central (ver fig. 1).

100%

Chile, 46% S - 56% S

Islas Malvinas

Islas Kerguelen

Islas Príncipe Eduardo

Costa patagónica argentina

Australia-Nueva Zelanda

Islas Auckland y Campbell

Chile, 40% S - 409 S

Chile, 40% S - 46% S

Isla Tristán da Cunha

Islas Juan Fernández

Arco de Escocia

Península Antártica

FIG. 4. Dendrograma C de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2) basado en 195 especies de briozo-

os magallánicos y de distribución circumaustral, sensu

Moyano, 1982.

335

Gayana Zool. 5514), 1991

El dendrograma C (Fig. 4) basado en una

matriz resultante de comparar las faunas briozoo-

lógicas de once localidades subantárticas distin-

tas más el Arco de Escocia y la Península Antár-

tica, exhibe tres grandes grupos a nivel de 30%

de afinidad. El más pequeño liga al Arco de Esco-

cia con la Península Antártica, lo que resulta de

su continuidad geográfica e hidrológica, por estar

ambos por dentro de la Convergencia y por pre-

sentar una serie de especies comunes, algunas de

las cuales también se encuentran en el área ma-

gallánica. El segundo conjunto integra a Chile

Magallánico con las islas Malvinas, más el Archi-

piélago de Kerguelen, la Isla Principe Eduardo y

la costa patagónica argentina. Este conjunto

representa la real dimensión y extensión de la

fauna magallánica de briozoos, que implica tener

su centro, por la mayor cantidad de especies que

presenta, en el extremo sur de América del Sur y

que se extiende en el sentido de la Deriva de los

Vientos del Oeste hasta el Oceáno Indico. El ter-

cer grupo incluye a la costa chilena entre los 36%

y 460 S, las islas Auckland y Campbell y el área

Australo-Neozelandesa. Esta relación resulta de

la existencia de varias especies casi o completa-

mente circumaustrales, como Ogivalia elegans y

Foveolaria elliptica por ejemplo. Como una rama

aparte, pero de igual nivel dentro de este grupo,

aparecen los archipiélagos de Tristan da Cunha y

Juan Fernández, situados en el Atlántico Sur y

en el Pacífico Suroriental, respectivamente.

Las relaciones que muestra el dendrograma

C se basan en la distribución espacial de las 195

especies presentes alrededor del cono sur de

América del Sur sensu Moyano (1982). Así por

ejemplo, al considerar a Kerguelen se le asignan

38 especies “magallánicas” en un total de 79 para

estas islas; a las islas Malvinas le corresponden 76

de 76, es decir, el ciento por ciento de su briozoo-

fauna; y al área de Australia-Nueva Zelanda 16

de un total de 400. Esto obviamente ocasiona

una distorsión que aumenta con el alejamiento

desde el centro de la región magallánica. Si la

matriz en que se basa el dendrograma se rehace

con los números reales de especies de cada locali-

dad, recalculando los valores del índice de afini-

dad se obtiene otro dendrograma (no incluido

aquí) en que las relaciones entre las diversas áreas

son más o menos las mismas, pero las uniones

—con excepción de las localidades cercanas a

336

Magallanes— a niveles de afinidad mucho más

bajos. Esto significa que a pesar del “error inicial”

el patrón zoogeográfico que sugiere el dendrogra-

ma se mantiene. Aunque Hayward et al. (1987-

1990) han descritos muchas nuevas especies para

las islas subantárticas del Atlántico Sur, las rela-

ciones zoogeográficas parecen mantenerse, ya

que muchos de esos nuevos taxones han sido en-

contrados en el Estrecho de Magallanes (ver Ad-

dendum IV).

Cualitativamente la briozoofauna magallá-

nica se define por poseer 14 especies de Ctenosto-

mata, 43 de Cyclostomata y 139 de Cheilostoma-

ta. Salvo por la existencia de varias especies de

Cyclostomata comunes entre la Antártica y Ma-

gallanes, la briozoofauna magallánica es clara-

mente independiente de la antártica, aunque su

endemismo (54,59%) es menor.

VL BRYOZOA DE CHILE CENTRAL Y NORTE

Sobre la base de más de 50 especies de briozoos,

especialmente del orden Cheilostomata, presen-

tesentre Arica y Quellón, Viviani (1969) propuso

un esquema zoogeográfico de la costa chilena,

distinguiendo 4 provincias: Peruana (2%-20% S),

Chilena (20-409 S), Norpatogónica (40%-46* S)

y Surpatagónica (46"-56* S).

Sobre una matriz construida con los datos

de Viviani, se ha obtenido el dendrograma D

(Fig. 5). En éste se ven dos grupos fundamentales

que se separan al 70% de afinidad. El primero

agrupa localidades desde los 22% S a los 39% S

entre Tocopilla y Mehuín; el segundo desde los

33% a los 41” S agrupa localidades, con excep-

ción de Isla Negra, al sur de Mehuín. A éstos dos

grupos principales se une Arica al 61% de afini-

dad, y a todos éstos a menos de un 10% de afini-

dad se les une la localidad de Carboneros. Salvo

esta última, un área estuarina, todas las demás es-

tán poco separadas por compartir un gran núme-

ro de especies comunes, lo que caracteriza al lito-

ral chileno al norte de Puerto Montt. Con todo,

en este dendrograma se insinúa un área norte

desde Arica a Mehuín y una sur desde Mehuín a

Quellón, aunque las afinidades entre sus localida-

des componentes reúnan a áreas muy apartadas

como Iquique y Zapallar o a Isla Negra con loca-

lidades al sur de los 39% S.

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

100%

Arica, 18% S

Tocopilla, 22% S

Antofagasta, 23" S

Coquimbo, 30% S

Los Molles, 32% S

Llico, 34% S

Tomé, 36" S

Iquique, 20% S

Zapallar, 32% S

lloca 35% S

Mahuín, 39% S

Isla Negra, 33% S

Lacui, 41% S

Pelluco, 39% S

Quellón, 43% S

Maullín, 41% S

Pargua, 41” S

Carboneros, 39% S

FIG. 5. Dendrograma D de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2) basado en los ectoproctos litora-

les chilenos, sensu Viviani, 1969.

337

Gayana Zool. 55(4), 1991

100%

Chile, 18% S - 22? S

Chile, 22? $ -

Chile, 26% $ -

Chile, 30% S - 34% S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 429 S

Chile, 42? $ -

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52% S - 56% S

Atlántico Sudoccidental

Archipiélago de Juan Fernández

Isla de Pascua

FIG. 6. Dendrograma E de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2) basado en 267 especies de briozoos de

Chile continental sudamericano e insular pacífico oriental.

El dendrograma E (Fig. 6) resultante de la

distribución de las 267 especies chilenas señala-

das previamente por Moyano (1983) indica al

50% de afinidad cuatro grupos: el primero desde

los 18% S a los 46? S, el segundo desde los 46% S

hasta el Atlántico suroccidental, y los grupos 3 y

4 que incluyen las islas de Juan Fernández y Pas-

cua, respectivamente.

Si se excluyen las islas de Juan Fernández y

Pascua con sus especies endémicas, quedan 234

especies (Fig. 7), las que agrupadas en una matriz

de afinidad zoogeográfica dan el dendrograma F

(Fig. 8), en el que se advierte el mismo patrón ge-

neral del dendrograma E, pero con las uniones

entre los diversos grupos a nivel más alto. Si en-

338

tonces se excluyen las 18 especies de más amplia

distribución a lo largo de la costa chilena, las 234

anteriores se reducen a 216. La nueva matriz

confeccionada con éstas da lugar al dendrograma

G (Fig. 8), en el que las localidades entre los 38"

S y los 42? S aparecen como un nuevo grupo al

50% de afinidad, pero ligado ahora a los tres gru-

pos más australes. Una interpretación general de

este dendrograma indica un área norte entre los

18% S y los 38% S y un área sur entre los 38% S y

el Atlántico Sur. Este análisis muestra que el área

entre los 38% S y los 46” S aparece como de tran-

sición entre un área septentrional y otra austral,

ligándose a una u otra según se deje o no un cier-

to número de especies de gran distribución latitu-

dinal (ver Tabla IT.

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

18% S 22 26 30 34 38 42 46 52 S6” S ATLS

FIG. 7. Distribución latitudinal supuestamente continua entre las localidades más septentrional y más austral de 234 espe-

cies de briozoos presentes entre Arica y el Cabo de Hornos. Los números detrás de las líneas continuas indican el número

de especies con igual distribución latitudinal.

339

Gayana Zool. 55(4), 1991

50 60 70 80 90 100%

Chile, 182.5 - 229.8

Chile, 229 S - 26% S

Chile, 26% S - 30% S

Chile, 30% S - 34% S

ye SU Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 42% S

Chile, 42% S - 46% S

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52? S - 56% S

Atlántico Suroccidental

Chile, 18% S - 22% S

Chile, 22% S - 26 S

Chile, 26% S - 30% S

Chile, 30% S - 34% S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 42% S

Chile, 42% S - 46% S

Chile, 46% S - 52% S

Chile, ,5228:=5698

Atlántico Suroccidental

FIG. 8. Dendrograma F y G de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2). F basado en 234 especies que

incluyen 18 de muy amplia extensión. G basado en 216 con exclusión de esas 18. En ambos no se incluyen

las especies de Pascua y de Juan Fernández.

340

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I

0 10 20 30 40 so 60 70 80 90 1l100%

H (Indice de CZEKANOWSKI)

Chile, 18% S.- 22% S

Chile, 22? S - 26% S

Chile, 26% S- 30% S

A Chile, 30% S - 34% S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 42% S

Chile, 42% S - 46% S

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52% S - 56% S

| LAA —Á

onda ELA Atlántico Suroccidental

L (Indice de KULCZINSKI-2) dt td

Chile, 22% S - 26% S

Chile, 26% S - 30% S

Chile, 30% S - 34? S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 429 S

Chile, 42% S - 46% S

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52% S - 56% S

Atlántico Suroccidental

FIG. 9. Dendrograma H e I de afinidad zoogeográfica de 234 especies de briozoos chilenos. H. construido

sobre los valores del Indice de Czekanowski e I sobre el índice de Kulczinsky-2. Para la confección de ambos

se supuso una distribución continua entre los registros más extremos de cada especie.

341

Gayana Zool. 55(4), 1991

10 20 30 40 50 60 70 80 90 100%

J (Indice de CZEKANOWSKI)

Chile, 18% S - 22% S

Chile, 22% S - 26% S

Chile, 26% S - 30% S

Chile, 30% S - 34% S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 42% S

Chile, 42% S - 46% S

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52% S - 569 S

Atlántico Suroccidental

10 20 30 50 60 70 80 90 100%

K (Indice de KULCZINSK Y -2)

Chile, 18% S - 22% S

Chile, 22% S - 26% S

Chile, 26% S - 30% S

Chile, 30% S - 34% S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 429 S

Chile, 42% S - 46 S

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52286048

Atlántico Suroccidental

FIG. 10. Dendrogramas J y K de afinidad zoogeográfica basados en 223 especies de briozoos chilenos. J sobre

los valores del índice de Czekanowski y K sobre el índice de Kulczinsky-2. Para construirlos se supuso una

distribución continua entre los registros extremos de cada especie.

342

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

Los dendrogramas D, E. F y G se fundan en

los registros puntuales de las diferentes especies a

lo largo de la costa chilena. Al revisar éstos se

constata 2 áreas zoogeográficas con un límite ha-

cia los 46% S. A resultados parecidos se llega en

los dendrogramas H e 1 (Fig. 9) y J y K (Fig. 10)

basados en suponer una distribución continua de

las especies entre el registro más septentrional y

el más austral. Los dendrogramas J y K sobre

223 especies coinciden estrechamente con el

dendrograma G, indicando entonces que el área

entre los 38 S y los 46% S se une a la zona zoogeo-

gráfica austral. Estos resultados llevan a la mis-

ma conclusión anterior: con esta metodología se

hace evidente la existencia de una zona de transi-

ción entre la fauna magallánica y la del centro y

norte de Chile ubicada entre los 38% S y 46% S.

Su calidad de transición y no de una provincia in-

dependiente está avalada por la mezcla de espe-

cies australes y septentrionales, existiendo algu-

nas aparentamente endémicas como Catadysis

pygmaeum. Otras especies que se supusieron en-

démicas como Celleporella chiloensis y Ple-

siothoa australis de Chiloé y la Isla Mocha, res-

pectivamente, han sido halladas en la costa ar-

gentina sur y en Nueva Zelanda (Moyano y Gor-

don, 1980); otras como Romancheina labiosa e

Inversiula nutrix que se suponían netamente ma-

gallánicas han aparecido más al norte aparente-

mente asociadas con zonas de surgencias y otras

septentrionales como Retevirgula areolata llegan

hasta esta zona. Si se quiere elegir un punto con-

vencional de separación entre las briozoofaunas

septentrional y austral, éste podría quedar en la

mitad de esta área de transición y coincidente

con un accidente geográfico importante, el Canal

de Chacao.

La región septentrional presenta alrededor

de 40 especies endémicas (casi 38%) (Tabla Ila).

Este porcentaje podría disminuir, pues no se sabe

cuántas de estas especies se extienden más al nor-

te O más al sur por las aguas más profundas. Su

nivel de endemismo es suficiente como para asig-

narle el rango de provincia briozoogeográfica chi-

lena.

VII. LA BRIOZOOFAUNA DEL TALUD FRENTE A

CHILE CENTRAL Y NORTE

Los primeros indicios que se tuvieron de la exis-

tencia de briozoos de grandes profundidades en el

343

talud o en las planicies abisales de la placa de

Nazca frente a Chile, fueron aportados por la Ex-

pedición del Challenger (Busk, 1884). Con excep-

ción de la zona magallánica y la Antártica, donde

se han registrado briozoos bajo los 200 m de pro-

fundidad, prácticamente nada se ha conocido de

estas faunas hasta hace muy poco. Moyano en

1981 dio a conocer la presencia de Ogivalia ele-

gans y Orthoporidroides robusta a 600 m de pro-

fundidad fuera de la Isla Mocha, y en 1983 se se-

ñaló la presencia de las de menor profundidad

que aparecen en la Tabla II. Sólo en 1989 se des-

cubrieron casi todas las especies de la Tabla HI.

El examen de esta fauna demuestra su abso-

luta novedad, especialmente en relación con los

briozoos ciclostomados, dentro de los cuales de 7

especies 5 son nuevas incluyendo tres nuevos gé-

neros; las dos restantes quedan determinadas sólo

hasta nivel genérico por falta de caracteres adul-

tos en las muestras existentes, pudiendo en el fu-

turo resultar también nuevas especies. (Moyano,

1991a). En los Cheilostomata la situación es pa-

recida con no menos de 9 especies nuevas (ver

Addendum l). Esto indica el escaso o nulo cono-

cimiento de esta fauna y la posibilidad cierta de

seguir encontrando nuevas especies. Zoogeográ-

ficamente es interesante por presentar géneros y

especies previamente conocidos sólo del Hemisfe-

rio Norte, v. gr. Hippothyris emplastra Osburn,

1952. El género Antropora ha sido señalado con

anterioridad para el Pacífico norte (Osburn,

1950) y la especie Cellaria humilis Moyano,

1983, previamente descrita de Chile Central, fue

hallada en Nueva Zelanda por Gordon (1984).

Kinetoskias pocillum Busk y Kenella bise-

riata (Busk) son especies típicamente abisales. El

género Kinetoskias caracteriza las aguas profun-

das del océano mundial (Hayward, 1981) y K. bi-

seriata originalmente descrita de aguas chilenas

parece caracterizar sólo al Pacífico (Busk, 1884).

La relación de esta fauna con aquella de la

plataforma continental sólo se establece con

aquellas especies que llegan al borde de ella tales

como: Ellisina levata; Cellaria humilis; Antropo-

ra paucicryptocysta; Arachnopusia areolata;

Andreella megapora; Fenestrulina microstoma y

Bellulopora bellula. A. megapora muestra un

gran rango batimétrico al encontrarse desde casi

el intermareal al talud superior; B. bellula, en

cambio, siempre aparece bajo los 100 m de pro-

fundidad.

Gayana Zool. 55(4), 1991

TABLA 111. Bryozoa batiales en aguas chilenas

Aut. Loc. Prof.(m) Pol Fz

*1, Metastomatopora bugei Moyano Mo D 1400-1800 = In

*2. Peristomatopora harmelini Moyano Mo D 1400-1800 = In

*3. Tetrastomatopora giselae Moyano Mo D 1400-1800 — In

*4. Proboscina fragilis Moyano Mo A 1650 — In

*S. Idmidronea sp. Mo A 1650 — NW

*6. Tubuliporina incertae sedis Mo D 1400-1800 = In

*7. Disporella minima Moyano Mo B,D 1200-1800 In

**8.. Ellisina profunda sp. n. Mo A,D 1400-1800 l av In

**9.. Callopora nazcae sp. n. Mo B 1200-1500 l ay In

**10. Aplousina grandipora Sp. N. Mo D 1400-1800 0) In

**1]. Rhamphonotus bathyalis sp. n. Mo A 1650 lay In

12. Hippothyris emplastra Osburn Mo C 540-1050 lav In

** 13. Hippothyris austrinus Sp. N. Mo A 1650 l av In

** 14. Pachyegis? iquiquensis Sp. N. Mo E 540-1050 lav In

15. Chaperiopsis sp. Mo A 1650 lav In

**16. Smittina chilensis sp. n. Mo ASE 350-1650 lav In

**17. “Porina” arcana sp. n. Mo D 1400-1800 0) V

18. Ellisina levata Hincks Mo EG 350 lav In

19. Cellaria humilis Moyano Mo E: D 200-1800 lav E

20. Antropora paucicryptocysta Moyano Mo E 350 lav In

21. Arachnopusia areolata Moyano Mo ESE 200-350 lav In

22. Andreella megapora Moyano y Melgarejo Mo G 220 l av In

23. Fenestrulina microstoma Moyano Mo EJE 350 10) In

24. Bellulopora bellula Osburn Mo E 200-300 lav In

**25. “Cellepora” aliena sp. n. Mo B 1200-1500 (9) V

26. Orthoporidroides robusta Moyano Mo H 600 2av V

27. Ogivalia elegans (A'Orbigny) Mo H 600 lav V

28. Kinetoskias pocillum Busk Bu Ch 3953 lav Fd

29. Kenella biseriata (Busk) Bu Ch 3953 10) Fd

30. Menipea pateriformis (Busk) Bu Ch 3953 2av €

AUTORES: Mo= Moyano, 1970-1991; Bu=Busk, 1884

LOCALIDADES: A 25 millas fuera de la Isla Mocha, 1650 m, 5 nov. 1987; B Fuera de Pisagua; 1200-1500 m; 1986; C

Entre Arica e Iquique. 540-1050 m; Ch Expedición del Challenger, Busk, 1884; D Punta Gruesa, 30/35 millas fuera de

Iquique, 1400-1800 m, 1986; E Fuera de Punta Nugurue, 35% 45” S; 72% 40” W; 350 m; F Fuera de Punta Nugurue, borde

superior del talud, 200-300? m, noviembre 1986. G Fuera de Cabo Tablas, 220 m; 21 nov. 1964 H Frente a Lebu, SNASTISA

73% 40” W, 600 m, octubre de 1979.

*Géneros y especies nuevos recién descritos (Moyano, 1991a);

**Descritas en el Addendum 1 de este trabajo.

DIVERSIDAD ZOARIAL (Ez): In= incrustante; Fd= buguliforme; V =vinculariforme; C =celariforme; VALORES DE DIVERSL-

DAD ZOARIAL (Calculados a través de H' a partir de la columna Fz de acuerdo a Moyano 1978,1982 a y b, 1983): N=30;

H'=1,3119; H'máx. (4 formas zoariales) =1,9999; H'/H'máx. 100= 65,60%.

POLIMORFISMO DE CHEILOSTOMATA(N = 23): spp. sin polimorfos=5(21,74%); 1 av= 16(69,56); 2 av=21(8,69%).

Con un endemismo conocido hasta ahora de VIII LA BRIOZOOFAUNA DEL ARCHIPIÉLAGO

66.6%, una diversidad zoarial proporcionalmen- DE JUAN FERNÁNDEZ

te alta de E = 65,6% y con una gran proporción

de ciclostomados, esta briozoofauna se muestra Las 21 especies que Marcus señaló para estas

diferente de la de la plataforma continental en la islas en 1921 han sido elevadas a no menos de 43

misma área, mereciendo por lo tanto el rango de en la actualidad con las adiciones posteriores de

provincia zoogeográfica Batial Pacífico- Viviani (1969), y Moyano (1983) y este trabajo.

Suroriental. Recientemente se han añadido (Moyano, 1985,

344

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

1986): Galeopsis juanfernandensis Moyano,

1985. Galeopsis megaporus Moyano, 1985.

Celleporina asymmetrica Moyano, 1985; Chori-

zopora brongniarti (Audouin, 1826); Micropora

mortenseni Livingstone, 1929; Fenestrulina thy-

reophora (Busk) (= Fenestrulina pulchra Gor-

don, 1984) y Celleporella (A.) muricata (Busk,

1876). Este número podría aumentar seguramen-

te, ya que los muestreos hechos hasta el momen-

to han sido esporádicos. Todos estos nuevos re-

gistros corresponden al orden Cheilostomata y 3

de las 7 especies son endémicas para el archipiéla-

go. Con estos nuevos hallazgos los Cheilostomata

incluyen 29 especies (67,44%) y el endemismo,

con 15 especies alcanza a un 34,8%.

Su elevado endemismo basta para conside-

rarla como una provincia zoogeográfica en el sen-

tido de Briggs, 1974, pero las relaciones zooge-

ográficas evidenciadas a través de las otras espe-

cies son complejas. Entre los briozoos ciclosto-

mados, Frondipora masatierrensis la caracteriza

absolutamente por su abundancia, tamaño y

estricto endemismo, no así Diastopora reticulata

y Diastopora ridleyi presentes en Magallanes.

Dentro de los Cheilostomata Microporella lunife-

ra, Galeopsis pentagonus, Micropora mortense-

ni. Fenestrulina thyreophora, Rogicka biseriale

(= Arthropoma biseriale) y otras la conectan con

el área Australo-Neozelandesa y la especie Cras-

simarginatella kumatae lo hace con el Pacífico

Norte. Celleporella muricata sólo se conoce de

Kerguelen y Juan Fernández, revelando pro-

bablemente antiguas conexiones con el área su-

bantártica. Otras conexiones arcaicas atañen a

las especies del género Opaeophora Brown; O. le-

pida, del Pacífico Occidental y del Indico aparece

desde Chiloé al Golfo de Arauco; O. lepida mo-

nopia fue descrita del Plioceno Superior de

Nueva Zelanda (Brown, 1952) y hallada viviente

en el área de las islas Kermadec (Gordon, 1984);

una forma muy afín a ésta fue hallada en Juan

Fernández y descrita como la nueva especie O.

browni por Moyano en 1983, mostrando cone-

xiones con Nueva Zelanda.

El género Galeopsis (=Spiroporina) se en-

cuentra representado en Nueva Zelanda por seis

especies, de las que G. pentagonus también se

halla en Chile austral, pero no en Juan Fernán-

dez a pesar de lo señalado por Marcus (1921) y

repetido por Gordon (1984). En su lugar apare-

cen otras tres que son endémicas: G. magaporus,

345

G. reteporelliformis y G. juanfernandensis (Mo-

yano, 1985).

Otro caso importante es el del género Escha-

roides representado en J. Fernández por E. moli-

nai. Este género de la familia Umbonulidae es de

distribución mundial apareciendo representado a

lo menos por dos especies en aguas del Mediterrá-

neo, por cuatro en el Artico, cuatro en el Antárti-

co y dos en el área de Nueva Zelanda. A pesar de

esto, el género se expresa pobremente a lo largo

de la costa pacífica de América habiéndose en-

contrado aparentemente una sola especie entre

las islas Galápagos y el Golfo de California atri-

buida por Osburn (1952) a E. prestans (=E. an-

gela) de Australia y Nueva Zelanda. Y no ha sido

encontrado hasta ahora en toda la costa sudame-

ricana de Chile. Sin embargo, la familia Umbonu-

lidae sí está representada en esta costa por una es-

pecie sumamente común: Umbonula alvareziana

del intermareal e infralitoral superior desde Arica

a Magallanes. Exochella longirostris del infralito-

ral superior acompaña y reemplaza en parte a U.

alvareziana en toda el área magallánica. Pero es-

tas especies a su vez no están representadas en

Juan Fernández. Una explicación razonable para

esta distribución no parece fácil.

Aunque todo lo anterior se basa en especies

recolectadas alrededor de Masatierra, otras

muestras recientemente examinadas por el autor

le permiten asegurar que esta fauna tan caracte-

rística se extiende al sur y norte del archipiélago,

siempre al oeste de la corriente de Humboldt, lle-

gando hasta las Islas Desventuradas: San Félix y

San Ambrosio. Sobre esta base se podría conside-

rar al archipiélago de Juan Fernández y a las

Islas Desventuradas como partes de una misma

provincia briozoogeográfica: la provincia Fer-

nandense.

IX. LA BRIOZOOFAUNA DE LA ISLA DE PASCUA

Aunque es parcialmente conocida muestra rasgos

que la hacen diferente como ya lo demuestra su

posición en el dendrograma E. La revisión de

Moyano de 1983 había señalado 16 especies para

la isla, información que se ha usado en la confec-

ción del dendrograma E. Estas sin embargo su-

ben a 18 si se considera a Cribrilaria innominata

identificada previamente sólo hasta nivel genéri-

co, y a Disporella sp. aún inidentificada a nivel

específico. Entre las especies más características

Gayana Zool. 55(4), 1991

conocidas hasta ese momento están Parasmittina

proximoproducta emparentada morfológicamen-

te con formas semejantes de las islas Galápagos y

de Hawaii (ver Soule y Soule, 1973) y Cribralaria

labiodentata congenérica con especies vivientes

de cerca de las islas Bonín en el Pacífico Norte y

10 9

8 ca:

N* de

especies de un

total de 34

1537

NI EN AU NZ IS

de Nueva Zelanda y con otra fósil de Australia.

Por otra parte, esta fauna muestra también espe-

cies de muy amplia distribución como Membra-

nipora tuberculata, Aetea anguina y Cribrilaria

innominata y otras tropicopolitas como Canda

pecten scutata y Escharina pesanseris.

CO AN

IP AE ANPBNSTE

FIG. 11. Afinidad zoogeográfica de Isla de Pascua que indica el número de especies que estando en la isla tam-

bién se hallan en otras áreas.

NI especies no identificadas, no comparables; EN especies endémicas; AU presentes también en Australia;

NZ en Nueva Zelanda; IS en Indonesia; IN en el Océano Indico; JF en el archipiélago de Juan Fernández;

JP en Japón; AF en Africa del Sur; TP tropicopolitas; CO cosmopolitas; AN en la Antártica.

Muestras muy recientes (1984, 1985) permi-

ten casi duplicar la briozoofauna de Isla de Pas-

cua conocida hasta hace poco. Los nuevos taxa

son: Bugula dentata; Bugula scaphoides; Bret-

tiella ovicellata; Arthropoma cecilii; Serupocella-

ria maderensis (como Scrupocellaria sp., Moyano

1983); Thalamoporella gothica indica; Crisina ra-

dians; Cellaria sp. n. (como Cellaria sp., Moyano

1983); Celleporina sp.; Cribrilaria sp. n.; Diasto-

pora sp.n.; Tubulipora sp. n.; Parasmittina sp. 1;

Parasmittina sp. 2; Idmidronea sp. De estas, las

siete primeras refuerzan aún más la relación de la

briozoofauna de Pascua con las del Pacífico Occi-

dental e Indico, lo cual ya se había evidenciado

en el dendrograma E y se reafirmará en los

dendrogramas L y M. Sobre la base de los hallaz-

gos de Newman y Foster (1983) referentes a que

la Isla de Pascua es parte de un complejo sistema

346

de áreas sumergidas que se extienden entre el

borde occidental de la placa de Nazca y Sudamé-

rica y que por lo tanto representa una enorme su-

perficie sobre la cual se asientan y han evolu-

cionado las especies de briozoos, es altamente

probable que queden muchas otras especies por

ser descubiertas al tener en cuenta los postulados

de la teoría de Biogeografía insular (Schopf,

1978).

La fig. 11 construida para un poster presen-

tado en París en la 8? Reunión de la Asociación

Internacional de Briozoología (Moyano, 1991c)

muestra las relaciones de esta fauna con diferen-

tes áreas lejanas y cercanas a Isla de Pascua. Las

mayores afinidades se establecen con las briozoo-

faunas del Indopacífico y de Australia. Las co-

nexiones con Sudamérica son casi nulas, produ-

ciéndose nexos a través de especies cosmopolitas

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

como Membranipora tuberculata que se halla

tanto en el centro de Chile como en Isla de Pas-

cua. Con el archipiélago de Juan Fernández se

comparten sólo dos especies. De las 36 especies

conocidas hasta ahora (Tabla II), las especies en-

démicas alcanzan a no menos de 9 (25%). Estas

aumentarán probablemente a 12 (33,33%)

(Tabla Ila) si se describen como nuevas, varias es-

pecies que aún están determinadas a nivel genéri-

co (Tabla II). Cualesquiera de estos valores por sí

solos bastan para considerarla una provincia

briozoológica independiente faunísticamente

—la provincia Pascuense— pero relacionada con

el Pacífico Occidental.

X. LA BRIOZOOFAUNA CHILENA:

DISCUSION

Zoogeográfica y espacialmente la briozoofauna

chilena incluye cuatro conjuntos continentales y

dos insulares, a saber: antártico, subantártico o

magallánico, temperado o centro-norte chileno,

fernandense y pascuense. El número total de es-

pecies debe bordear las 600 pues no se pueden su-

mar en forma directa las aproximadamente 350

que existen al interior de la Convergencia Antár-

tica (Rogick, 1965; Moyano, 1978) y ca. 300

entre Arica y Magallanes con inclusión de las de

las islas oceánicas chilenas pues existen especies

comunes entre estas regiones. Con todo, el núme-

ro total de especies es probablemente superior a

600 porque deben existir muchas especies desco-

nocidas a lo largo del talud sudamericano, algu-

nos de cuyos elementos en poder del autor

prueban corresponder a nuevas especies (ver ad-

dendum ID). Argumenta en favor de esta afirma-

ción el que se haya encontrado más de 50 espe-

cies de briozoos nuevos para la fauna chilena en

los últimos 8 años (ver Tabla I) y en 1990 otras

10 sólo de las familias Smittinidae y Microporelli-

dae (ver Addendum IV). Algunas de estas espe-

cies como Kenella biseriata y Kinetoskias po-

cillum ya fueron recolectadas a grandes profundi-

dades por el Challenger (Busk, 1884) frente a

Chile central, debiendo existir muchas otras co-

mo se han ido descubriendo en todo el mundo a

medida que se han intensificado las explora-

ciones batiales y abisales (Gordon, 1987a). Por

otra parte, es altamente probable que el número

de especies de la Isla de Pascua deba aumentar

347

como se ha demostrado con las recolecciones

hechas en los últimos años ya señaladas más arri-

ba. La misma consideración sería aplicable a las

islas de Juan Fernández.

Considerando que la fauna antártica en su

totalidad está marcada por su uniformidad y un

altísimo endemismo (Hedgpeth, 1969; Dell,

1972; Rogick, 1965) que en la Península Antárti-

ca alcanza a 170 de 203 especies (83,74%) y que,

por ende, constituye una región zoogeográfica

propia suficientemente reconocida (Ekman,

1953; Briggs, 1974), el dendrograma L (fig. 12)

sólo se ha basado en las 267 especies de briozoos

chilenos sudamericanos e insulares (Moyano,

1983). Este permite relacionar las diferentes áreas

aunque se parta de especies solamente presentes

en la fauna chilena ya definida. En este sentido

este dendrograma presenta las mismas limita-

ciones ya señaladas para el dendrograma C.

En el dendrograma L a un 15% de afinidad

destacan dos grandes conjuntos de localidades,

uno septentrional desde Alaska hasta los 46" S

incluyendo a la Isla de Pascua y otro austral des-

de los 46 S hasta la Antártica más Nueva Zelan-

da, Australia y las islas Juan Fernández. Discri-

minando al 50% de afinidad se distinguen 10

grupos. El primero incluye a localidades chilenas

desde los 18% S a los 38% S; el segundo a Chile

desde los 38% S a los 46? S, es decir el área corres-

pondiente a la zona de transición anteriormente

descrita; el tercero incluye sólo a las especies del

Perú; el cuarto al área panámica desde Guaya-

quil al Golfo de California; el quinto con las espe-

cies que van desde California hasta Alaska; el

sexto y séptimo separados de los demás a muy ba-

jo nivel incluyen a Juan Fernández y a Pascua; el

octavo a Nueva Zelanda y Australia; el noveno a

la Antártica y el décimo a Chile austral y al

Atlántico suroccidental. Como este dendrograma

tiene la distorsión inicial de basarse sólo en las

267 especies señaladas por Moyano en 1983, se

le podría objetar no considerar las especies descu-

biertas en estos últimos años, y por no usar los

números totales de especies presentes en todas las

áreas fuera del territorio chileno. A la primera

objeción habría que señalar que la mayoría de los

nuevos hallazgos valen para las islas oceánicas y

la Antártica acentuando su diferencia con las

briozoofaunas de América del Sur. A la segunda,

que el incluirlas sólo acentuaría la separación

entre los diversos grupos y áreas faunísticas al

crecer el número total de especies por comparar,

Gayana Zool. 55(4), 1991

us Alaska-Vancouver

Vancouver-California

Golfo California-Guayaquil

Islas Galápagos

Perú

Chile, 18% S - 229 S

Chile, 22? S - 26% S

Chile, 26% S - 30% S

Chile, 30% S - 34% S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 42% S

Chile, 42% S - 46% S

Isla de Pascua

Juan Fernández

Nueva Zelanda

Australia

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52% S - 56% S

Atlántico Suroccidental

Antártica

FIG. 12. Dendrograma L de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2) basado en 267 especies de briozoos

presentes en Chile continental e insular y en el Pacífico Nororiental y Sudoccidental.

348

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100

Perú

Alaska

Oregón

Panamá

Galápagos

E MESS

Chile, 22% S - 26% S

Chile, 26% S - 30% S

Chile, 30% S - 34% S

Chile, 34% S - 38% S

Chile, 38% S - 42% S

Chile, 429 S - 46% S

Chile, 46% S - 52% S

Chile, 52% S - 56% S

Atlántico Suroccidental

Juan Fernández

Australia

Nueva Zelanda

Isla de Pascua

Antártica

FIG. 13. Dendrograma M de afinidad zoogeográfica (Indice de Kulczinsky-2) basado en más de 460 especies

de briozoos presentes a lo largo de las plataformas continentales de Chile Antártico, Sudamericano e Insular.

Se incluyen también otras costas del Pacífico Sudoccidental, del Atlántico Sur y del Pacífico noroccidental,

lugares en los que una parte de estas especies está presente.

349

Gayana Zool. 55(4), 1991

y al disminuir proporcionalmente de especies

“chilenas sudamericanas” compartidas con áreas

tan alejadas como Alaska, Nueva Zelanda o la

Antártica. La afinidad entre las diversas áreas se

reduciría a un mínimo haciendo menos explícitos

los dendrogramas produciéndose el efecto que se

evidencia en el dendrograma M analizado más

abajo. Si por otra parte se sacaran las especies de

muy amplia repartición, v. gr. de Celleporella

hyalina, Microporella ciliata o Membranipora tu-

berculata, se acentuaría más la separación de al-

gunas áreas de las cuales existe muy poca infor-

mación, como de la costa peruana. Lo que este

dendrograma muestra es un patrón zoogeográfi-

co general al reunir áreas que comparten muchas

O pocas especies. En él se han considerado todas

las especies de la misma manera, tengan áreas de

distribución grandes o pequeñas, puntuales o no.

No se ha seguido aquí el criterio de muchos

zoogeógrafos (Brattstróm y Johanssen, 1983) de

considerar sólo las especies que han sido señala-

das un cierto número de veces en un área deter-

minada. Eliminar a aquéllas con registros escasos

conlleva el peligro de pérdida de información. Así

por ejemplo Celleporella chiloensis sólo conocida

del Estero de Castro en la isla de Chiloé (Moya-

no, 1982) fue considerada en el análisis. Después

de esto, la misma especie fue hallada en las costas

de la isla Navarino en el extremo sur de Chile y

frente a la desembocadura del Río de La Plata,

indicando claramente una distribución de tipo

magallánico. Caso semejante es el de Plesiothoa

australis descubierta en la Isla Mocha y luego en-

contrada en el sur de Argentina y en Nueva Ze-

landa denotando así una distribución subantárti-

ca. La misma situación se plantea con el caso de

Galeopsis (=Spiroporina) reteporelliformis en-

contrada hasta ahora sólo en la cima de un guyot

cercano a Masatierra en el archipiélago de Juan

Fernández, que forma parte de un complejo de

tres especies que caracterizan al archipiélago.

La inclusión de la briozoofauna antártica

chilena más los nuevos registros posteriores a

1983 eleva el número total de briozoos chilenos a

470 (Tabla II). Analizando zoogeográficamente

este conjunto mediante los métodos señalados

más arriba se llega al dendrograma M en el que

se mantiene en general el mismo patrón del

dendrograma L. La escasa briozoofauna peruana

conocida aparece remotamente unida a la chilena

y a las del Pacífico oriental tropical y sep-

tentrional. La fauna de la Isla de Pascua aparece

350

ligada a todo el conjunto a un nivel inferior al

23% de afinidad y la de la Antártica a sólo un

7%. Este dendrograma viene a reforzar los es-

quemas briozoogeográficos previos (Moyano,

1982a, 1982b, 1983) en los que Chile aparece di-

vidido en 5 provincias. (Fig. 14). A éstas se debe

añadir la nueva provincia batial pacífico orien-

tal austral que aquí se propone y resal:ar que la

provincia magallánica se conecta como se sugirió

previamente (Moyano 1982a, 1982b, 1983) a

otras dos áreas insulares subantárticas Tristan Da

Cunha y Kerguelen, con briozoofaunas propias y

también claramente afines a la Magallánica.

Aquí se les considera formalmente como provin-

cias briozoológicas subantárticas (Fig. 14).

Schopf, Fisher y Smith (1979) distinguieron

32 provincias sobre la base de la distribución de

briozoos, bivalvos, corales y foraminiferos. En es-

te esquema, casi todo el territorio chileno está

incluido en una provincia chilena, que se extien-

de desde Guayaquil hasta el Estrecho de Ma-

gallanes. La Tierra del Fuego, las islas Malvinas y

la costa argentina adyacente son incluidas en la

provincia Falkland. Esta proposición zoogeográ-

fica no es avalada por la distribución de los Fora-

miníferos y de los Briozoos a ambos lados del co-

no sur de América del Sur (Moyano, 1982a y Za-

pata, 1987, respectivamente), ni por lo que al res-

pecto demuestran aquí los briozoos (fig. 14).

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AS SR

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FIG. 14. Provincias briozoogeográficas chilenas y otras afines

a la provincia Magallánica.

CH = provincia Chilena; JF = provincia Fernandense; IP

= provincia Pascuense, M1 = provincia Magallánica; M2

= provincia de Tristan Da Cunha; M3 = provincia de Ker-

guelen; PA = provincia Antártica. (La provincia Batial

pacfico-Oriental-Austral, que yace por debajo de la provincia

chilena, no ha sido representada explícitamente aquí, por fal-

ta de espacio).

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

No se ha considerado aquí en forma especial

la distribución batimétrica porque faltan muchos

datos especialmente en relación con las distribu-

ciones de las especies al norte del Canal de Cha-

cao. La mayoría de las especies señaladas para es-

ta zona son litorales e intermareales (Viviani,

1969, 1977; Moyano, 1982a, 1986), pero muchas

de las nuevas descritas por Moyano en 1983 se

encuentran bajo los 50 m de profundidad. El

complejo sistema de corrientes a lo largo de la

costa chilena, así como las surgencias señaladas

explícitamente por Viviani (1979) y Brattstróm y

Johanssen (1983) no han sido tomados en cuenta

al recolectar briozoos de tal manera que los traba-

jos que existen carecen frecuentemente de datos

de ese tipo. Por otra parte, además de ser pocos

entregan una información limitada y no útil para

un análisis valedero. Para el sur de Chiloé se

tienen más datos, pero tampoco son regulares ni

latitudinal ni batimétricamente. Faltan especial-

mente en el área comprendida entre el Golfo

Corcovado y el Goldo de Penas.

Con todo, hay claros indicios del patrón de

distribución general de las faunas temperado-

cálidas y temperado-frías dado por Battstróm y

Johanssen, 1983; las primeras se van extinguien-

do gradualmente hacia el sur manteniéndose en

superficie y las últimas disminuyen hacia el nor-

te, pero prolongándose en profundidad. Una ma-

nifestación de esta situación es la distinción de un

área de transición entre las faunas de origen sep-

tentrional y austral. Así, especies de origen clara-

mente austral avanzan hacia el norte aparecien-

do a profundidades diversas como elementos

sublitorales. Es el caso de Romancheina labiosa

especie netamente magallánica que, aunque nor-

malmente no se halla en muestras costeras de

Chiloé, aparece frente a Concepción bajo los 20

m de profundidad (aparentemente asociada con

la gran surgencia de esta zona) y también en Las

Cruces frente a Santiago. Podría tratarse también

de poblaciones relictas en la zona centro sur re-

manentes de una situación anterior del Terciario

Superior, lo que es demostrado indirectamente

por los fósiles de fauna netamente magallánica

que se hallán en Tubul (Arauco), los que en la ac-

tualidad habitan normalmente desde Chiloé al

sur (observación personal). A este razonamiento

podría también contribuir el caso /nversiula

nutrix, descrita originalmente de las cercanías de

Cabo de Hornos, que aparece en varios lugares a

lo largo de la costa hasta cerca de los 30% S. Por

el lado contrario Retevirgula areolata presente

entre California y Oregón en el Pacífico Norte,

reaparece en la costa central de Chile llegando

más allá de los 42% S.

Mención aparte merece la fauna antártica

en el sentido de sus conexiones con otras fuera de

la Antártica. Algo de eso ya se señaló más arriba

al discutir la distribución de los Cyclostomata y

de los Cellularina antárticos y subantárticos.

Existen indicios de que algunos grupos netamen-

te antárticos se extienden hacia el norte por las

grandes planicies abisales. Este parece ser el caso

del género Camptoplites (Gordon, 1986). Pero

parece ser que algunas pocas especies pueden lle-

gar a ser bipolares. Así, y en relación con la teoría

de la bipolaridad, que hoy aparece poco acep-

table, d'Hondt 1990 describe Adelascopora se-

cunda charcoti del Artico,cuya subespecie nomi-

nal A. secunda secunda recién fue descrita de la

Antártica, en 1988. La validez de esta subespecie

es innegable y su existencia plantea varios proble-

mas tanto en lo de la bipolaridad como en el po-

der conocer la verdadera extensión geográfica de

las especies y subespecies del género Adelascopo-

ra.

CONCLUSIONES

Del estudio descrito más arriba, que incluye apor-

tes nuevos y reutiliza otros previos del mismo

autor (Moyano, 1982a, 1983), más los aportes

nuevos de los addenda l a IV de este mismo tra-

bajo, se pueden hacer las siguientes generaliza-

ciones y conclusiones sobre la briozoofauna de

Chile:

A. La fauna total de Briozoos Recientes de

Chile Continental Sudamericano, Pacífico Insu-

lar Oriental y Antártico alcanza a 470 especies,

repartidas en 369 (78,51%) del orden Cheilosto-

mata 80 (17,02%) del orden Cyclostomata y 21

(4,47%) del orden Ctenostomata. Este número

total subirá casi a 500 si se añaden 7 ciclostoma-

dos nuevos (Moyano, 1991 a y b) y las nuevas es-

pecies y nuevos registros que se añaden en los ad-

denda l a IV de este trabajo. Sobre la base de la

experiencia previa se presume que la fauna resi-

dual o potencial aún desconocida podría ser de

alrededor de 100 especies, con lo que la briozo-

ofauna reciente debería llegar a 600 o más espe-

cies.

Gayana Zool. 55(4), 1991

B. El porcentaje de endemismo de las

briozoofaunas disminuye desde más de un 80%

en la Antártica a menos de 40% para Chile

centro-norte y a ca. 30% en las islas de Juan Fer-

nández y Pascua. Los mayores valores de diversi-

dad zoarial se registran para la Antártica e Isla de

Pascua y el menor para Chile Centro-Norte. Los

mayores grados de especialización colonial medi-

dos por la presencia, número y diversidad de indi-

viduos (castas o polimorfos) se da en los briozoos

antárticos endémicos y en los de Isla de Pascua y

los menores en los de Chile Centro-Norte. Los

briozoos ciclostomados se encuentran porcen-

tualmente mejor representados en las islas oce-

ánicas chilenas y peor representados en Chiie

Centro-Norte. Y los ctenostomados sólo están

bien representados en Magallanes y en Chile

Centro-Norte.

C. La briozoofauna de la Península antárti-

ca con más de 200 especies aparece muy indivi-

dualizada, marcada por un endemismo superior

al 80%, con una alta diversidad zoarial y con una

alta especialización en términos de un alto de-

sarrollo de individuos especializados: avicularias,

quenozooides, vibracularias. Esta fauna constitu-

ye parte de la Provincia Antártica sensu Briggs,

1974. La conexión con la fauna magallánica se

hace principalmente a través de los briozoos

ciclostomados.

D. La briozoofauna Magallánica posee ca.

200 especies equiparándose con la de la Penínsu-

la Antártica, pero con un endemismo menor, y

constituye la provincia briozoogeográfica Ma-

gallánica. Esta se extiende a ambos lados del co-

no sur de América del Sur desde ca. los 42* S.

Las briozoofaunas de Tristan Da Cunha y de

Kerguelen están claramente emparentadas con la

briozoofauna magallánica constituyendo otras

dos provincias afines de una misma Región

Zoogeográfica Briozoológica Subantártica.

E. La briozoofauna de Chile Central y Sep-

tentrional (18% S-42* S) con poco más de 100 es-

pecies con un endemismo superior al 30% for-

ma la provincia briozoogeográfica Chilena. Esta

fauna probablemente se continúa hasta el norte

del Perú como sucede con la mayoría de los gru-

pos zoológicos constituyendo una provincia

Peruano-chilena. El estado actual de los conoci-

352

mientos briozoológicos de la costa peruana no

permite confirmar plenamente este aserto.

F. La parte superior del talud de la costa chi-

lena sudamericana (250-1.800 m) entre ca. 20% S

y 38% S presenta una briozoofauna particular,

parcialmente conocida, pero rica en especies en-

démicas y en otras presentes en o emparentadas

con formas del Pacífico centro-oriental y noro-

riental. Esta fauna por su endemismo actual su-

perior al 50% parece representar una provincia

briozoogeográfica distinta de las provincias An-

tártica, Magallánica y Chilena, asignándosele

tentativamente el nombre de Provincia Batial

Pacífico-oriental-austral.

G. La briozoofauna del Archipiélago de

Juan Fernández y de las islas Desventuradas (San

Félix y San Ambrosio) constituida hasta ahora

por unas 43 especies aparece marcada por un en-

demismo de más de 30% constituyendo la pro-

vincia briozoogeográfica Fernandense. Sus rela-

ciones zoogeográficas son complejas mostrando

conexiones con las briozoofaunas de toda la

cuenca pacífica austral.

H. La briozoofauna de la Isla de Pascua

constituida por no menos de 36 especies presenta

un endemismo de más de 30% formando la pro-

vincia briozoogeográfica Pascuense. Esta fauna

se halla íntimamente relacionada con las del Pací-

fico Occidental e Indico y sólo remotamente con

las del Pacífico Oriental.

I. Se describen como nuevos para la ciencia

dos géneros y diez especies: Klugerella gen. n., Fi-

laguria gen. n., Aplousina grandipora Sp. N.,

Callopora nazcae sp. n., “Cellepora” aliena sp. n.,

Ellisina profunda sp. n., Hippothyris austrinus

sp. n., Klugerella gordoni sp. n., Pachyegis

iquiquensis sp. n., “Porina” arcana Sp. n.,

Rhamphonotus bathyalis sp. n. y Smittina chi-

lensis sp. n.

J. Se redefine el taxón Cribrimorpha,

restringiéndosele a aquellas especies cuyo pericis-

to está formado de costillas carentes de una arti-

culación basal. Acorde con esto se considera co-

mo tales a las especies de Membraniporella sensu

auctt. y no a los calopóridos cribrimorfos ni a los

grupos semejantes a éstos.

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

AGRADECIMIENTOS

El autor se hace un deber en agradecer a todos

aquéllos que han contribuido al conocimiento de

los briozoos chilenos a través del aporte de mate-

rial, quienes han sido y son colegas y alumnos de

quien escribe. Sin embargo, debo mencionar aquí

expresamente al señor Raúl Soto, de la Universi-

dad Arturo Prat, quien ha puesto en mis manos

una cantidad inapreciable de muestras del talud,

de las que se ha obtenido la mayor parte de las

nuevas especies y géneros aludidos anteriormen-

te.

También debo agradecer a la Dirección de

Investigación de la Universidad de Concepción

con cuyos apoyos financieros (Proyectos CIC

2.08.45, 1976; VIC 20.38.08, 1984, 1985 y VIC

20.38.13, 1988, 1989) el autor ha podido hacer

estudios previos a este trabajo; y al Laboratorio

de Microscopía Electrónica dependiente de esta

misma repartición. Igualmente al Instituto An-

tártico Chileno que, al financiar viajes al Territo-

rio Antártico Chileno me ha permitido formar

una sólida colección antártica usada aquí. A

FONDECYT en cuyo proyecto 616/89 actué co-

mo coinvestigador, habiéndome permitido mejo-

rar el conocimiento de los briozoos litorales de

Chile Central. Al Ministro per il Coordinamento

della Ricerca Scientifica e Tecnologica, organiza-

dor de la 1* Spedizione Magellano (1991) dentro

del Programa General Italiantartide, en la que el

autor participó permitiéndole en terreno actuali-

zar el conocimiento de los briozoos magallánicos.

A los briozoólogos, especialmente P.J. Hay-

ward y coautores (Swansea, U.K.) y a D.P. Gor-

don (Wellington, N.Z.) cuyos trabajos de los años

"80 en adelante, enviados prestamente a este

autor, le han permitido actualizar las listas

faunísticas aquí consignadas. Y a los Dos Reviso-

res Anónimos que me ayudaron a pulir el ma-

nuscrito y subsanar —al menos en parte— las im-

perfecciones, errores y omisiones que en él des-

cubrieron. Las imperfecciones que queden son

sólo de mi responsabilidad.

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Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

ADDENDUM I

BRYOZOA CHILENOS MARINOS DEL TALUD CON-

TINENTAL

Las especies que se describen a continuación

fueron obtenidas en los lugares más abajo imdica-

dos, los que serán identificados en las descrip-

ciones sólo por las letras que los preceden.

El material tipo se deposita en el Museo

Zoológico de la Universidad de Concepción

(MZUC).

Las microfotografías fueron obtenidas con

un microscopio electrónico de barrido en el Labo-

ratorio de Microscopía Electrónica de la Univer-

sidad de Concepción utilizando la metodología

tradicional.

LOCALIDADADES DE RECOLECCIÓN

A. 25 millas fuera de la Isla Mocha, 1650 m. 5

nov. 1987; pesquería de Dissostichus mawsoui

Substrato: grandes rocas, irregularmente cilíndri-

cas de color anaranjado recubiertas de esponjas,

braquiopodos, corales solitarios y foraminíferos.

Donadas por Pablo Spórer. Briozoos: Rhampho-

notus bathyalis sp. nov.; Smittina chilensis sp. n.;

Ellisina profunda sp. n.; Hippothyris australis sp.

n.; Chaperiopsis sp.

B. Fuera de Pisagua; 1200-1500 m; 1986; pes-

quería de Dissostichus mawsoni. Substrato: una

roca dura, casi plana densamente perforada recu-

bierta de pequeños corales solitarios, un gorgóni-

do pedunculado y foraminíferos. Col. Guillermo

Guzmán. Briozoos: Callopora nazcae sp. n.;

“Cellepora” aliena sp. n.

C. Entre Arica e Iquique; 540-1050 m; Proyecto

PNUD, Universidad Arturo Prat. Substrato: una

roca plana con grandes orificios que contiene es-

ponjas aplastadas y grandes foraminíferos.

Briozoos: Pachyegis iquiquensis sp. n.; Hippo-

thyris emplastra Osburn.

D. Punta Gruesa, 30/35 millas fuera de Iquique;

1400-1800 m; 1986; Proyecto PNUD, Universi-

dad Arturo Prat. Substrato: una roca de arenisca

llena de cavidades irregularmente esféricas con

foraminíferos y muchos zoarios de ciclostoma-

dos. Briozoos: Aplousina grandipora sp. n; Ellisi-

na profunda sp. n.; “Porina” arcana sp. n.; Cella-

ria humilis Moyano.

E. Fuera de Punta Nugurúe, 35% 45'S; 720

40"W; 350 m;. Colectores Rivera 8 Wendt. Subs-

trato: trozos de areniscas imperforados con cora-

les solitarios, braquiopodos, grandes tubos de ser-

púlidos, ascidias, esponjas y foraminíferos.

Briozoos: Arachnopusia areolata Moyano; Fe-

nestrulina microstoma, Moyano; Cellaria humilis

Moyano; Antropora paucicryptocysta; Smittina

chilensis sp. n. y Ellisina levata Hincks.

F. Fuera de Punta Nugurúe, borde superior del

talud, quizá entre 200 y 300 m, por el tipo de

briozoofauna que presenta (ya que la etiqueta no

indica profundidad); noviembre 1986. Col. Peña.

Un trozo retorcido de arenisca con grandes tubos

serpúlidos y foraminíferos. Briozoos: Arachnopu-

sia areolata Moyano; Fenestrulina microstoma

Moyano, Cellaria humilis Moyano y Bellulopora

bellula Osburn.

G. Fuera de Cabo Tablas, 220 m; 21 nov. 1964;

Coll. H. Moyano. Pequeños trozos irregulares y

muy duros de arenisca. Briozoos: Ellisina levata

Hincks, Andreella megapora Moyano 8: Melga-

rejo y Bellulopora bellula Osburn.

Descripción de las especies batiales nuevas y

redescripción e ilustración de otras poco conoci-

das.

Orden CHEILOSTOMATA

1. Ellisina profunda sp. n.

Lám. I, MI, MD.

DIAGNOSIS

Zooides ovalados, aplastados, delicados con una

Gayana Zool. 55(4), 1991

gran opesia oval levemente expandida distalmen-

te en la zona opercular. Gimnocisto moderada-

mente desarrollado y oblicuamente dispuesto

alrededor de la zoecia. Criptocisto muy angosto y

finamente granuloso. Con una a tres avicularias

interzoeciales por zooide, pequeñas, de mandíbu-

la triangular aguda y dirigidas distalmente. Ovi-

cela endozoecial parcialmente desarrollada

dentro de la cámara de una avicularia.

El nombre científico del latín profundus

profundo, hondo, alude a las aguas profundas en

que la especie se encuentra.

Material: Holotipo MZUC 19031; de la localidad

Paratipos MZUC 19032, varios zoarios de

la localidad D.

OBSERVACIONES

Especie similar a Ellisina antarctica Has:

tings, y a Membranipora constantia Kluge, am-

bas de las regiones subantárticas y antárticas, pe-

ro diferente de ellas en el número y dirección de

las avicularias interzoeciales.

DISTRIBUCIÓN: Norte y centro de Chile en el ta-

lud.

2. Callopora nazcae sp.n.

Lám. Il, AL, AD, MI.

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, blanquecino, unilaminar, Zo-

oides ovalados, provistos de un gimnocisto bien

desarrollado que produce unas 10 espinas

circum-laterales, delicadas y frontalmente curva-

das, criptocisto en forma de un borde amplio y

descendente densamente tuberculado. Ovicela hi-

perestomial, pequeña, globosa, mucho más an-

gosta que el zooide. Avicularias epizoeciales

ausentes, pero con numerosas avicularias interzo-

eciales de paredes gruesas y resistentes, irregular-

mente cónicas con pico y mandíbulas dirigidos

oblicuamente.

El nombre científico deriva de la Placa de

Nazca a la que enfrenta el área donde esta espe-

cie fue encontrada.

Material: Holotipo MZUC 19033, de la localidad

Paratipos MZUC 19034, de la localidad B.

358

OBSERVACIONES,

Esta especie se caracteriza y al mismo tiempo di-

ferencia de las demás del género por su pequeña

ovicela, por carecer de avicularias dependientes

como en la mayoría de las otras especies congené-

ricas y por sus peculiares avicularias interzo-

eciales.

Distrigución: Talud en el norte de Chile.

3. Aplousina grandipora sp. n.

Lám. I, ABI, ABD.

DIAGNOSIS

Zooides grandes, de color café claro, ovalados y

de paredes murales muy delicadas. Gymnocisto y

criptocisto casi ausentes. Sin espinas. Sin avicula-

rias. Ovicela endozoecial que se desarrolla dentro

de un quenozooide distal que posee un gran poro

circular frontal; éste parece corresponder a una

opesia porque posee un criptocisto amplio y

gruesamente tuberculado.

El nombre científico deriva de las palabras

latinas grandis = grande y porus = poro, indi-

cando la existencia del gran poro frontal queno-

zooidal a través del que es perceptible la ovicela.

Material Holotipo MZUC 19035 de la localidad

Paratipos MZUC 19036 de la localidad D.

OBSERVACIONES

La principal característica que distingue a esta es-

pecie de Aplousina es la estructura ovicelar que

semeja a la de Ellisina levata.

Distrigución: Talud del norte de Chile.

4. Rhamphonotus bathyalis sp. n.

Lám. IL. MD, ABI, ABD.

DIAGNOSIS

Zoario unilaminar, blanco. Zooides irregular-

mente hexagonales cubiertos por una membrana

delgada brillante, separados por surcos profun-

dos. Pared frontal calcárea, densamente granula-

da. Area oral trapezoidal con rincones redonde-

ados y con los bordes laterales y distal algo levan-

tados, con cuatro espinas orales disto-laterales.

Ovicela no cerrada por el opérculo, relativamente

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

pequeña, parcialmente inmersa en el zooide dis-

tal, provista de un área frontal central granulada.

Con una avicularia turriforme cuyo pico y man-

díbula están oblicuamente dirigidos hacia arriba

y enfrentando el borde lateral zooidal; mandíbula

avicularial triangular alargada articulada sobre

fuertes cóndilos que no se tocan en la línea me-

dia.

El nombre de la especie deriva de la palabra

de origen griego batial, que indica un hábitat pro-

fundo más abajo del borde de la plataforma con-

tinental.

OBSERVACIONES

La posición sistemática de esta nueva especie

puede prestarse a discusión, ya que estructural-

mente presenta una reducción extrema de la ope-

sia, la que se hace mucho más pequeña que en las

especies conocidas del género. Está claramente

relacionada con los géneros Amphiblestrum

Gray y Rhamphonotus Norman —muy próxi-

mos entre sí— pero su avicularia columnar la

acerca más a Rhamphonotus.

MareriaL: Holotipo MZUC 19037, la mayor parte

de una colonia rota por su parte central prove-

niente de la localidad A.

Paratipo MZUC 19038, la parte más pequeña de

la misma colonia.

DisTrIBUCIÓN: Talud de Chile central.

5. Hippothyris emplastra Osburn, 1952

Lám. III, AL

Hippothyris emplastra Osburn, 1952, Lám. 40,

figs. 13-14.

OBSERVACIONES,

A disposición del autor sólo existió la pequeña

colonia inmadura usada para la fotografía MEB.

Como el descriptor lo señaló previamente, las zo-

ecias son variables en forma y tamaño, aunque

tienden a cuadrangulares. La pared frontal apar-

te de las varias corridas de poros marginales que

faltan en el área central, muestra una escultura

calcárea como de panal de abejas y una pequeña

avicularia triangular bajo la abertura.

MaTErRIaL: MZUC 19039. Una colonia pequeña e

inmadura de la localidad C.

359

DisTRIBUCIÓN: California, ca. 900 m (Osburn, 1952).

Talud del norte de Chile.

6. Hippothyris austrinus Sp. n.

Lám. III, AD, MI, MD, ABI, ABD.

Diacnosis: Zoario unilaminar, incrustante. Zoecias

más hexagonales que cuadradas. Area central de

la pared frontal imperforada, carente de la escul-

tura tipo panal de abejas. Frecuentemente con

una gran avicularia triangular alargada que ocu-

pa la parte central de la pared frontal, dirigida

proximalmente. Ovicela hiperestomial perforada.

El nombre de la especie deriva de la palabra

latina austrinus = austral, aludiendo al Hemisfe-

rio austral en que fue hallada en oposición a la es-

pecie tipo descubierta en el Hemisferio Norte.

MaTERIaL: Holotipo: MZUC 19040 de la localidad

Paratipos: MZUC 19041 de la localidad A.

OBSERVACIONES

Especie característica y diferente de la especie ti-

po del género, por carecer de la escultura en pa-

nal de abejas y por presentar una gran avicularia

de dirección proximal.

DisTrIBUCIÓN: Talud de Chile central.

7. Pachyegis? iquiquensis sp. n.

Lám. IV, AL AD.

DIAGNOSIS

Zoario blanquecino, incrustante, unilaminar y

multiserial. Zooides cuadrado-ovales, convexos,

fuertemente calcificados y de superficie granulo-

sa. Pared frontal muy gruesa, con unas pocas are-

olas muy separadas e infundibulares. Abertura

en forma de campana con 5-6 espinas caducas la-

terales y distales, sin cóndilos proximales y con

un dentículo grueso mediano originado en la

abertura secundaria. Con un avicularia suboral

aguda dirigida proximalmente. Ovicela hiperesto-

mial parcialmente inmersa.

Nombre específico derivado de la ciudad de

Iquique, en cuyas cercanías se obtuvieron los es-

pecímenes.

Gayana Zool. 55(4), 1991

MaTerIaL. Holotipo MZUC 19042, una colonia

muerta de la localidad C.

Paratipo MZUC 19043, el pequeño trozo zoarial

usado para la fotografía MEB.

OBSERVACIONES

Especie notoriamente calcificada colocada tenta-

tivamente en el género Pachyegis sensu Osburn,

1952, con el que comparte la muy gruesa pared

frontal, la abertura primaria simple y la presencia

del dentículo oral proximal.

DistribucióN: Talud del norte de Chile.

8. Chaperiopsis sp.

Lám. IV, MI.

DIAGNOSIS

Especie de Chaperiopsis que tiene una gran Ovi-

cela hiperestomial y una avicularia grande, pe-

dunculada, ancha, dirigida proximalmente; con

espinas bifurcadas que surgen del pedúnculo avi-

cularial.

OBSER VACIONES

A pesar de que la mayor parte del material está

dañado, no hay dudas de su pertenencia al géne-

ro Chaperiopsis y aunque parece ser una especie

diferente de las conocidas dentro del género, pero

fenéticamente afín a algunas de Nueva Zelandia

descritas por Gordon (1982), es conveniente por

el momento dejarla sólo hasta nivel genérico en

espera de más y mejor material.

MaTERrIaL: MZUC 19044 de la localidad A.

DistriucióN: Talud de Chile central.

9. Smittina chilensis Sp. n.

Lám. IV, MD, ABI, ABD.

DIAGNOSIS:

Zoario incrustante, unilaminar, plano, multise-

rial, de color violáceo. Pared frontal levemente

convexa y densamente perforada. Con una mi-

núscula avicularia suboral prácticamente

incluida en el lado proximal del peristoma. Lírula

y cardelas desarrolladas pero no prominentes.

Ovicela hiperestomial, globosa, con pocos poros

frontales y no inmersa en el zooide distal.

360

El nombre científico alude a Chile, en cuyo

mar vive.

Material: Holotipo MZUC 19045 de la localidad

OBSERVACIONES

Aunque esta especie tiene la apariencia de varios

esmitínidos australes, se destaca por su color

violáceo y por la gran densidad de poros que per-

foran la pared frontal. Una especie semejante del

extremo sur de Chile es Smittina jullieni Moyano

(= Smittia purpurea Jullien, 1888) y también

Smittina purpurea (Hincks) aparentemente de

distribución circumaustral subantártica. De la

primera difiere la nueva especie por su pared

frontal y distribuciones geográfica y batimétrica,

y de la segunda por su angosta lírula frente a la

muy ancha de la especie de Hincks.

Distrigución: Talud de Chile central.

10. “Porina” arcana sp. n.

Lám. V. AL, AD, MI.

DIAGNOSIS

Zoario erecto, arborescente calcáreo y aparente-

mente cementado al sustrato por no existir ri-

zoides; los zooides se abren todos en un solo pla-

no delimitando dos caras zoariales; pared frontal

con una escultura superficial intrincadamente

corrugada. Zooides alargados con un peristoma

de longitud moderada, con poros marginales y

frontales esparcidos. Abertura primaria sin seno,

cardelas ni lírula. Abertura secundaria con un se-

no proximal en V. Con una abertura frontal en la

base del peristoma, a modo de espiramen. No se

observaron ovicelas ni avicularias.

El nombre científico del latín arcanus

secreto, alude a la incerteza de sus características

totales, así como a lo incierto de su posición gené-

rica.

Materia: Holotipo MZUC 19046 de la localidad

OBSERVACIONES

Todo el material de estudio consiste en una base

zoarial y un fragmento ramificado. La estructura

en forma de espiramen de la base de los peristo-

mas recuerda una estructura similar de las espe-

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

cies de Porinas. 1. A pesar de la escasez del mate-

rial y de la ausencia en él de avicularias y ovice-

las, los demás caracteres hacen a esta especie dife-

rente de todas las que se hallan en la literatura

briozoológica reciente.

Distriución: Talud del norte de Chile.

11. “Cellepora” aliena sp. n.

Lám. V, MD, ABI, ABD.

DIAGNOSIS

Zoario erecto, calcáreo y cementado al sustrato,

aparentemente ramificado, no existiendo ri-

zoides. Zooides urceolados de disposición celepo-

rina; pared frontal con una escultura superficial

cancelada, es decir, con depresiones de bordes an-

gulares, y con areolas periféricas escasas y relati-

vamente pequeñas. Area apertural prolongada

en una peristoma de longitud moderada. Abertu-

ra primaria sin seno, cardelas ni lírula. Abertura

secundaria de borde ensanchado y extendido ha-

cia afuera y prolongado aquí y allá en exten-

siones más cónicas que espiniformes. Con una

avicularia peristomiana, de tamaño moderado, de

punta aguda y dirigida hacia el centro del peristo-

ma. Abertura primaria simple, sin accidentes.

Ovicela o avicularias interzoeciales, aparente-

mente ausentes.

El nombre científico deriva del latín alienus

= ajeno, extranjero, raro, no usual, todos térmi-

nos aplicables a esta especie de posición sistemáti-

ca incierta.

MaTERIAL: Holotipo MZUC 19046 de la localidad

OBSERVACIONES

Todo el material de estudio consiste en una base

zoarial con evidencias de erguirse. Su estructura

general es “celeporiforme”. Sin embargo, la falta

de ovicelas impide por el momento situarla en

alguna familia de Celleporoidea. A pesar de la

escasez del material y de+la ausencia en él de ovi-

celas, la combinación de los caracteres existentes,

en especial la estructura apertural y la escultura

de la pared frontal, hacen a esta especie diferente

de todas las que se hallan en la literatura briozo-

ológica reciente.

DisTriBucióN: Talud del norte de Chile.

361

12. Ellisina levata (Hincks, 1882)

Lám. 1, AL AD.

Membranipora levata Hincks, 1882: 249.

Ellisinidra levata (Hincks): Canu y Bassler, 1933:

Ellisina levata (Hincks, 1882): Hastings, 1945:

87; Osburn, 1950: 50, lám. 4. fig. 4.

OBSERVACIONES

Los zoarios, muy aplastados, se ajustan clara-

mente a la descripción e ilustraciones de Osburn

(1950) especialmente en tener las ovicelas endo-

zoeciales inmersas en quenozooides.

MarErlaL: MZUC 19047 de la localidad E.

DistriBUCIÓN: Columbia Británica (Hincks, 1882)

(fide Osburn, 1950); California (Osburn, 1950) y

Chile central, de acuerdo a este trabajo.

13. Cellaria humilis Moyano, 1983

Lám. VI, AL

Cellaria humilis Moyano, 1983: 7, figs. 15-17.

Cellaria humilis Moyano: Gordon, 1984: 58,

Jám. 18.A.

OBSERVACIONES:

Sólo existen unos pocos fragmentos zoariales

conformando el material analizado. Un rasgo no

suficientemente enfatizado hasta el presente es la

carencia dentro de la abertura oral de los dentícu-

los proximales tan característicos de las especies

del género Cellaria.

MaTERIaL: MZUC 19048 de las localidades D, E,

DISTRIBUCIÓN:

Talud superior de Chile central (Moyano, 1983);

Chile septentrional según este trabajo; 33%02,6'S;

179%34,6'W en el área de Nueva Zelanda (Gor-

don, 1984).

14. Antropora paucicryptocysta Moyano, 1983

Lám. VI, AD.

Antropora paucicryptocysta Moyano, 1983: 6,

fig. 18.

OBSERVACIONES

El material observado concuerda con la descrip-

ción original. A primera vista esta especie parece

concordar con Akatopora circunsepta (Uttley,

1951) de Nueva Zelanda, ilustrada fotográfica-

mente por Gordon (1984), pero nuestro material

carece de las ovicelas que esta especie presenta.

Por esta razón es preferible por el momento de-

jarla en el genero Antropora sensu Osburn, 1950

y no en Akatopora sensu Gordon, 1984.

MaTErIaL: MZUC 19049.

DISTRIBUCIÓN

Entre Punta Nugurúe y Valparaíso, acorde con

este trabajo y el de la descripción original (Moya-

no, 1983).

15. Arachnopusia areolata Moyano, 1983

Lám. VI, MD.

Arachnopusia areolata Moyano, 1983: 7, fig. 4.

OBSERVACIONES

Especie de Arachnopusia caracterizada por su

simplicidad, carente de espinas orales y típica-

mente con una pequeña avicularia en el borde

distal del pericisto. Posee, además, una fila de

areolas laterales que rodean toda la zoecia en lo

que se llamaría gimnocisto. Los ejemplares con-

cuerdan en todo con la descripción original.

Materia MZUC 19050 de la localidad E y

MZUC 22174 de la localidad F.

DISTRIBUCIÓN

Entre Punta Nugurúe y Valparaiso, acorde con

este trabajo y el de la descripción original (Moya-

no, 1983).

16. Andreella megapora Moyano y

Melgarejo, 1978

Lám. VI, Mi.

Andreella megapora Moyano y Melgarejo, 1978:

170, figs. 5,5.

OBSERVACIONES

Los zoarios estudiados incrustaban rocas, pero

esta especie también incrusta caparazones de de-

cápodos de aguas profundas. Se reconoce fácil-

mente por sus inmensas opesíulas, su pequeña

avicularia proximal oblicua y su casi redonda

abertura oral carente de espinas. Especie aparen-

temente euribática, ya que se ha encontrado des-

de pozas intermareales hasta el borde superior del

talud.

MaTErIaL:. MZUC 19051 de la localidad G.

DISTRIBUCIÓN

Entre Concepción y Magallanes (Moyano y Mel-

garejo, 1978) y Valparaiso, según este trabajo.

17. Fenestrulina microstoma Moyano, 1983

Lám. VI, ABL

Fenestrulina microstoma Moyano, 1983: 8, figs.

3, 9.

OBSERVACIONES

Los ejemplares estudiados concuerdan perfecta-

mente con la descripción original. Esta especie de

Fenestrulina difiere de las otras presentes a lo lar-

go de la costa chilena por su mayor tamaño, ma-

yor cantidad de poros frontales no estrellados y

por su abertura proporcionalmente muy pe-

queña.

MaTERIaL: Zoarios de la localidad F.

Distribución: Chile central.

18. Bellulopora bellula (Osburn, 1950)

Lám. VI, ABD.

Colletosia bellula Osburn, 1950: 188, lám. 29,

fig. 1.

Bellulopora bellula (Osturn, 1950): Lagaaij,

1963: 184, lám. 4, fig. 2; Moyano y Melgarejo,

1978: 172, figs. 9-11; Ristedt, 1979: 149, lám. 2,

figs. 3,5, Moyano, 1984: 50, figs. 1, 2, 18-20.

OBSERVACIONES

Esta especie fue señalada por primera vez para

Chile por Moyano en 1978 a partir de una

muestra recolectada por la Expedición Mar Chile

I frente a lloca (casi 35%S). Posteriormente (Mo-

yano, 1984) fue analizada morfológicamente al

microscopio electrónico de barrido al compararla

con otros cribrimorfos chilenos. Especie única y

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

muy fácil de identificar dentro de los Cribrimor-

fos actuales por desarrollar su ovicela dentro de

un quenozooide, la que por lo tanto presenta un

pericisto frontal. Los especímenes estudiados en

esta Ocasión así como aquéllos dados a conocer

anteriormente por el autor, difieren de las formas

de los del Hemisferio Norte y Galápagos en el

menor desarrollo de las avicularias.

MaTerIaL: Varios zoarios de las localidades E y F.

DISTRIBUCIÓN

Chile Central, entre Punta Nugurúe y Valpa-

raíso, según este trabajo y otros anteriores del

autor, California e Islas Galápagos (Osburn,

1950); Golfo de México (Lagaaij, 1963); costas

de Georgia, USA (Ristedt, 1979).

DISCUSION

A las especies incluidas aquí habría que añadir

otras siete del orden Cyclostomata con las que

fueron inicialmente recolectadas. Ambos subcon-

juntos están constituidos por un gran porcentaje

de especies nuevas. En el caso de los Cyclostoma-

ta se incluyen también tres géneros nuevos. (Mo-

yano, 1991). Este hecho hace suponer con cierta

certeza que debe haber aún una gran cantidad de

nuevos taxones de nivel específico y genérico por

describir en las muy poco exploradas faunas del

talud continental de América del Sur. Incluso

podría aventurarse la idea de que también habría

—al menos en Bryozoa— nuevas familias por

describir, teniendo en cuenta que en este mismo

addendum se ha dejado prácticamente como in-

certae sedis a las especies “Porina” arcana sp. n.,

“Cellepora” aliena sp. n. y Pachyegis iquiquensis

sp. n. al asignarlas a tres géneros considerados

sensu latissimo.

Junto a las especies nuevas se describen e

ilustran otras ya conocidas que se extienden has-

ta el límite superior del talud. Se ilustran con

microfotografías MEB, especialmente aquéllas

descritas en un trabajo previo y presentadas allí

sólo con dibujos (Moyano, 1983).

Dentro del conjunto, es nuevo para Chile el

género Hippothyris Osburn, cuya especie tipo H.

emplastra Osburn no había sido detectada con

anterioridad en el Pacífico Sur. A ésta se añade

una nueva, A. austrinus sp. n., que coincide con

los caracteres genéricos, excepto en la carencia

del reticulado frontal tan característico de la es-

363

pecie tipo. Con este hallazgo, el género se extien-

de desde el Pacífico oriental septentrional al

austral.

La distribución de Cellaria humilis parece

ser muy vasta, tanto geográfica como batimétri-

camente. En las muestras estudiadas se en-

cuentra desde el borde de la Plataforma conti-

nental hasta ca 1800 m. de profundidad. Geográ-

ficamente ha sido señalada de ambas riberas

australes del Pacífico, en Chile (Moyano, 1983) y

Nueva Zelanda (Gordon, 1984).

Todo este conjunto, incluyendo las especies

de Cyclostomata —publicadas aparte— más las

de Cheilostomata forman una unidad zoogeográ-

fica distinta de la que se halla en la plataforma

continental, ya que está marcada por un ende-

mismo próximo al 50%. Las especies presentes

previamente conocidas permiten relacionar esta

fauna en forma débil, tanto en las áreas de Nueva

Zelanda (Cellaria humilis), del Golfo de Panamá

y Caribe (Bellulopora bellula) y de las costas de

California (Ellisina levata e Hippothyris

emplastra) como con las de Chile central y sur

(Andreella megapora). Todas estas especies con

excepción de H. emplastra no pueden considerar-

se propiamente batiales a diferencia de las que se

describen como nuevas.

El gran endemismo de las especies pro-

piamente batiales permite proponer tentativa-

mente la existencia de una provincia zoogeográfi-

ca del talud en frente de la costa de Chile central

y norte: Provincia briozoogeográfica Batial

Pacífico-oriental-austral.

BIBLIOGRAFIA

GORDON, D.P., 1982. (ver cita completa en la parte principal).

GORDON, D.P., 1984. (ver cita completa en la parte principal).

LaGaAan. R., 1963. New Additions to the Bryozoan Fauna of

the Gulf of Mexico. Publ. Institute of Marine Science,

Texas, 9: 162-236.

MOYANO G.H.I., 1983. (ver cita completa en la parte princi-

pal).

MOYANO G.H.I., 1984. Chilean Cribrimorpha (Bryozoa

Cheilostomata). Bol. Soc. Biol. Concepción. 55: 47-72.

MOYANO G., H. L y S.M. MELGAREJO, 1978. (ver cita

completa en la parte principal).

OSBURN, R.C., 1950. (ver cita completa en la parte principal).

OSBURN, R.C., 1952. (ver cita completa en la parte principal).

RISTEDT, H., 1979. Skeletal ultrastructure and astogenetic de-

velopment of some Cribrimorph Bryozoa. /n: Larwood,

G.P. y MB. Abbott (Eds.) Advances in Bryozoology.

The Systematics Association Special Volume 13: 14]-

152. Academic Press, London, 639 págs.

LÁMINA l.

Al y AD. Ellisina levata (Hincks, 1882)

Al. Zooides que muestran el criptocisto granular y las avicularias triangulares distales, horizontales x 40. AD. Ovicela en-

dozoecial desarrollada en un quenozooide a través de cuya opesia, de borde circular granular (criptocisto), se hace visible. x

MI y MD. Ellisina profunda sp. n.

MI. Zooides con una o dos avicularias triangulares, distales, pequeñas y aproximadamente paralelas al eje zoecial; x 50.

MD, Ovicela endozoecial inmersa en la cámara avicularial. Nótese a su lado derecho el estrecho criptocisto zoecial fina-

mente tuberculado. x 180.

ABI y ABD. Aplousina grandipora sp. n.

ABI. Zooide que exhibe un criptocisto de desarrollo mínimo y la ovicela distal inmersa en un quenozooide. x 44. ABD. Ovi-

cela endozoecial inmersa en un quenozooide cuya opesia de borde circular granular (criptocisto) deja ver la parte distal de la

misma. x 150.

364

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

Gayana Zool. 55(4), 1991

LAMINA II

Al, AD, MI. Callopora nazcae Sp. n.

Al. Zooides ovicelados, avicularias interzoeciales y un zooide infértil en vista lateral. x 72. AD. Vista frontal de varios zo-

oides. Nótese la opesia rodeada de fuertes espinas, el criptocisto marginal descendente y granuloso y en el zooide del medio

el gimnocisto proximal bien desarrollado. x 68. MI. Dos avicularias interzoeciales. x 144.

MD, ABI, ABD. Rhamphonotus bathyalis sp. n.

MD, Zooide ovicelado, con la avicularia turriforme proximal, la pequeña ovicela hiperestomial de tabula granular y la

obertura opesial muy reducida. x 100. ABI, Avicularia en vista lateral x 220. ABD, Vista frontal de la avicularia. Se puede

advertir gran similitud estructural con la de C. nazcae en la fig. MI. x 240.

366

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I

Gayana Zool. 55(4), 1991

LAMINA IIL

Al, Hippothyris emplastra Osburn, 1952.

Al. Vista de un zooide del borde colonial en crecimiento con el característico reticulado frontal y las varias corridas de po-

ros marginales. x 48.

AD, MI, MD, ABI, ABD. Hyppothyris australis sp. n.

AD, Trozo colonial. x 12. MI. Zooide carente de avicularia frontal x 45; MD, Area central de la pared frontal con la gran

avicularia de dirección proximal. x 120. ABI, Ovicela hiperestomial x 90. ABD, Abertura zoecial con las dos cardelas pro-

ximales. x 220.

368

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

Gayana Zool. 55(4), 1991

LÁMINA IV

Al, AD. Pachyegis iquiquensis Sp. N.

Al. Trozo zoarial. x 44. AD, Detalle de un zooide. Nótese el dentículo proximal, la pequeña avicularia asociada y la base de

las espinas laterales y distal. También son visibles la gruesa pared frontal corrugada y los pocos y grandes poros marginales.

x 130.

MI. Chaperiopsis sp.

MI, Zooides ovicelados y no ovicelados, con la gran avicularia proximal pedunculada, provista de espinas laterales ramifi-

cadas. x 30.

MD, ABI, ABD. Smittina chilensis Sp. n.

MD. Zooide juvenil que muestra la gruesa pared frontal densamente perforada y corrugada, así como la lírula en forma-

ción y la avicularia asociada. x 100. ABI, Detalle de la abertura que muestra la lírula x 250. ABD, Ovicela y apertura vistas

de lado. Nótese la avicularia suboral y las pocas perforaciones de la ovicela. x 80.

370

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

LAMINA V.

Al, AD, MI. “Porina” arcana sp. n.

Al. Extremidad de una rama del único zoario existente. x 28. AD, Zooide en vista frontal. Obsérvese la abertura secunda-

ria con un seno proximal en V, dos grandes poros marginales, los poros que perforan la pared frontal muy combada y el po-

ro mediano (¿espiramen?) bajo el seno proximal apertural. Llama la atención el extraordinario corrugamiento de las pare-

des calcáreas externas. x 140. MI, Uno de los zooides basales de la ramita fotografiada, con el poro mediano suboral más

notorio. x 140.

MD, ABI, ABD. “Cellepora” aliena sp. n.

MD, Zooide de costado, con la abertura secundaria de bordes elevados y festoneados, con una avicularia peristomial proxt-

mal dirigida distalmente. Se destaca la superficie totalmente marcada por depresiones bajas de bordes angulosos. La pared

carece de perforaciones, a excepción de las areolas marginales. x 120. ABI. Area apertural y avicularia. x 210. ABD. Otra

vista del área apertural que carece de seno y/o cardelas. x 180.

372

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

373

Gayana Zool. 5514), 1991

LAMINA VI

Al. Cellaria humilis Moyano, 1983.

Las aberturas carecen de los denticulos proximales y/o distales tan comunes en las especies de Cellaria. El zooide central

muestra una huella frontal central circular que corresponde al punto de origen de una rama secundaria que en esta especie

no se origina al término de los internodos, sino que en cualquier parte de su superficie x 130.

AD. Antropora paucicryptocysta Moyano, 1983.

Las estructuras triangulares de los extremos zoeciales corresponden a quenozooides o pequeñas avicularias. x 120.

MI. Andreella megapora Moyano y Melgarejo, 1978.

Nótese las grandes opesiulas reniformes y la pequeña avicularia proximal oblicua. x 97.

MD. Arachnopusia areolata Moyano, 1983.

Zooides ovicelados. Ovicela con ectocisto incompleto. Orificios pericisticos no ligulados. Abertura sin espinas y sólo con

una avicularia labial. Destacan las pequeñas areolas marginales que dan el nombre a esta especie. x 55.

ABI. Fenetrulina microstoma Moyano, 1983.

Obsérvese las dos o tres corridas de poros no estrellados que circundan el zooide y la abertura bucal proporcionalmente pe-

queña. x 95.

ABD. Bellulopora bellula (Osburn, 1950).

Son absolutamente notorias las “costillas-canales” cóncavas y en comunicación con una areola marginal. Por esta estructu-

ra parecen no ser homólogas con las costillas convexas y cilindrico-aplastadas de los cribrimorfos propiamente tales. La ovi-

cela del Zoario inferior, por su estructura demuestra ser un quenozooide donde se desarrolla la verdadera ovicela endozo-

ecial. x 65.

374

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

375

Gayana Zool. 55(4), 1991

ADDENDUM Il

El descubrimiento de avicularias de estructura

cribiforme, casi únicas dentro de los cribrimorfos

actuales, en Membraniporella antarctica Kluge,

1914, lleva a revisar su situación genérica dentro

de los Cribrimorpha actuales y a-redescribir la es-

pecie tipo.

Orden Cheilostomata, Busk, 1852.

Suborden Cribriomorphina, Harmer, 1926.

Superfamilia Cribrilinoidea, Hincks, 1879.

Familia Cribrilinidae, Hincks, 1879.

Klugerella gen. nov.

DIAGNOSIS

Zooides con pericisto bien desarrollado, formado

por costillas bifurcadas planas parcialmente fu-

sionadas a lo largo del eje central del pericisto.

Gimnocisto lateral de desarrollo moderado. Area

oral con uno o más pares de espinas, abertura

oral arqueada distalmente y enmarcada proxt-

malmente por el primer par de costillas pericísti-

cas; con salientes condilares próximo-laterales pa-

ra la articulación del opérculo. Ovicela hiperesto-

mial con ectocisto incompleto (ectoecio) que deja

expuesta la parte central del endocisto

(endoecio). Avicularias, cuando presentes, inter-

zoeciales, con un área pericística semejante a la

de los autozooides y una mandíbula muy similar

al opérculo zooidal, pero mayor. Con uno a po-

cos poros de comunicación interzooidales en pla-

cas rosetas distales y laterales. Ancéstrula tatifor-

me.

ETIMOLOGÍA

El nombre del género está dedicado a H. Kluge,

descriptor de la especie tipo. Se ha derivado del

nombre del autor y de la terminación del género

Membraniporella.

EspeciE tiro: Membraniporella antarctica Kluge,

1914. Antártica.

376

OTROS TAXA INCLUIDOS

Membraniporella bifurca, Powell, 1967, de

Three Kings Islands, Nueva Zelanda (Powell,

1967) y de la South Island, Nueva Zelanda (Gor-

don, 1986), Membraniporella bifurca, Powell:

Gordon, 1984, de Kermadec Ridge, y Membrani-

porella magnifica, Thornely, 1912, Océano Indi-

co.

Klugerella antarctica (Kluge, 1914) n. comb.

(Lám. VII)

Membraniporella antarctica Kluge, 1914: 677,

Lám. 33, fig. 7; Moyano, 1984: 57, figs. 14, 15,

SOI:

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, multiserial,

blanquecino-rosado a café claro. Zooides suave-

mente convexos, separados por surcos modera-

dos, gymnocisto algo desarrollado lateral y proxi-

malmente; pericisto formado de 13 a 21 costillas

bifurcadas distalmente, que se fusionan a lo largo

de la parte central del pericisto; cada costilla que

se bifurca deja entre sus ramas un orificio alarga-

do, los cuales forman dos filas látero-medianas

que alternan con otras dos corridas laterales de

espacios entre cada par consecutivo de costillas

frontales. Abertura Zoecial acampanada rodeada

por dos a cuatro espinas orales; éstas pueden bi-

furcarse distalmente. Ovicela hiperestomial cuyo

ectoecio deja un espacio frontal central triangu-

lar que deja a la vista el entoecio interno. Avicu-

laria grande, interzoecial, en forma de zueco con

un pericisto casi tan grande y de la misma estruc-

tura que el de los autozooides. Mandíbula avicu-

larial lingúiforme con la apariencia de un gran

opérculo zoecial hipertrofiado. Poros de comuni-

cación en forma de dos séptulas simples en cada

pared lateral y otra en la pared distal. Ancéstrula

tatiforme con cinco espinas marginales y rectas y

dos distales bifurcadas y curvadas frontalmente.

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

MEDIDAS EN MM DE ESTRUCTURAS ZOECIALES

DE KLUGERELLA ANTARCTICA

Min. Máx Xx S

Longitud zoecial 0.725 1.000 0.858 0.079

Anchura zoecial 0.375 0.525 0.440 0.046

Longitud abertura 0.138 0.213 0.176 0.015

Anchura abertura 0.175 0.225 0.189 0.014

Longitud avicularia 0.600 1.250 1.013 0.138

Anchura ovicularia 0.300 0.500 0.381 0.046

Largo mandíbula avicularia 0.325 0.550 0.464 0.058

Ancho mandíbula avicularia 0.225 0.400 0.333 0.042

Longitud ovicela 0.300 0.375 0.341 0.022

Anchura ovicela 0.188 0.375 0.309 0.054

DISTRIBUCIÓN

Especie antártica endémica. Sector Kaiser Land

Wilhelm 350-385 m (Kluge, 1914); Islas Heard

and MacDonald (d'Hondt, 1979). Shetlands del

Sur, 50 m (Moyano, 1978, 1984). Estrecho de

Gerlache, según este trabajo.

OBSERVACIONES

Existen algunas diferencias entre el material que

Kluge describió e ilustró en 1914 y el que exam!

nó Moyano en 1984 y el que se discute aquí. Los

especimenes de Kluge de las costas de la Antárti-

ca Oriental tenían dos y cuatro espinas orales bi-

furcadas en los zooides fértiles e infértiles, respee-

tivamente, mientras que los de la península an-

tártica tienen sólo uno en ambos tipos de zooides.

El número de poros de las placas rosetas era más

de dos en el material de Kluge y sólo uno en los

de la península antártica. Finalmente los Zzoarios

de Kluge carecían de avicularias y los nuestros

tienen algunas. Es altamente probable que los zo-

arios que Kluge examinó y describió correspon-

dieran a especímenes juveniles que aún no hu-

bieran formado avicularias, ya que en zoarios pe-

queños de la península antártica —examinados

previamente (Moyano, 1984) — faltaban comple-

tamente las avicularias. En aquéllos de más edad

estudiados aquí, las avicularias no son abundan-

tes, pero lo bastante grandes como para no pasar

desapercibidas. Una situación parecida se ha da-

do en el caso de Membraniporella bifurca Powell,

1967, en cuya diagnosis original no se describen

las avicularias, las que sí fueron descubiertas y

descritas más tarde por Gordon en 1986. Estas

avicularias demostraron ser muy parecidas a las

que aquí se describen para K. antarctica. Hacien-

do excepción de la existencia de avicularias las di-

ferencias entre expecímenes de lados opuestos de

la Antártica son pequeñas y no suficientes como

para considerarlas como especies diferentes.

Vale la pena discutir más extensamente aquí

la verdadera naturaleza de los heterozooides de

K. antarctica y los de las otras especies del géne-

ro. Citando a Cheetham and Cook (1983:181) se

puede definir a las avicularias como “Avicularia

are zooids in which the equivalent of the orificial

wall, the mandible, is relatively larger and more

intricately reinforced than orificial walls (opercu-

la) of ordinary feeding autozooids”. Los hetero-

zooides de K. antarctica se ajustan perfectamen-

te a esta definición, pues se trata esencialmente

de zooides comunes en los que el opérculo se ha

agrandado notablemente y en los que las paredes

pericísticas están sólo levemente disminuidas. Es-

to significa que han divergido moderadamente de

la estructura de los zooides comunes. En este sen-

tido estas avicularias son primitivas por retener

los caracteres zooidales. Esto también debería ser

en las partes blandas. Así sería esperable que es-

tas avicularias primitivas tuvieran un polípido

vestigial como el que se presenta en el género

anasco Steginoporella Smitt (Harmer, 1926). Sin

embargo, por el momento no es posible compro-

bar esta suposición, dado que el material dispo-

nible carece de las partes blandas por un mal pro-

cedimiento de fijación.

DISCUSIÓN:

a. EL GÉNERO KLUGERELLA Y SUS ESPECIES INTEGRANTES

Klugerella gen. nov. difiere de Membraniporella

en la estructura de las avicularias y en la presen-

cia de un pericisto formado de costillas bifurca-

das en su parte distal (aunque existen especies de

Membraniporella con costas bi o multifurcadas,

v. gr. M. marcusi y M. aragoi (Larwood, 1969)).

Por otra parte, la noción de género se justifica

además cuando existe un conjunto de taxa

ampliamente relacionado y diferente de otros

conjuntos que le están emparentados, en este ca-

so dentro de la familia Cribrilinidae. Y éste es el

caso de Klugerella gen. nov. A la especie tipo se

agregan otras especies asignadas a Membranipo-

rella s. 1. tales como M. bifurca Powell, 1967, M.

bifurca, Powell, sensu Gordon, 1984, y M. mag-

nifica Thornely, todas las cuales presentan un pe-

ricisto con una gran cantidad de costillas bifurca-

das en su parte distal. Se añade a esto, además, la

LÁMINA

VII Klugerella antarctica (Kluge, 1914).

Al. Vista de zooides ovicelados y no ovicelados y una avicularia interzoecial en el centro. x 44.

AD. Zooide ovicelado y avicularia. La avicularia muestra un pericisto igual al de los autozooides, aunque de extensión un

poco menor. La mandíbula es lingúiforme y articulada en dos cóndilos proximales junto al primer par de costillas. x 62.

MI. Zooide ovicelado. Nótese el área central ovicelar expuesta y las bases de las dos espinas látero-orales. x 105.

MD. Detalle del pericisto de la avicularia. Cada costilla, de anchura basal variable, se bifurca una o más veces, tocándose

por sus lados y en la parte central. x 240.

ABI. Autozooide visto de costado, mostrando los poros de comunicación de las paredes laterales, el área oral y el pericisto.

x 72.

ABD. Una de las cámaras de comunicación interzoecial. La abertura mayor da al zooide vecino y la menor al interior del

zooide. x 1120.

378

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.l.

Gayana Zool. 55(4), 1991

posesión de ovicelas hiperestomiales en las que el

ectoecio deja una fenestra central de forma va-

riable y en dos de ellas M. bifurca Powell, y an-

tarctica existen las notables avicularias interzo-

eciales de frontal cribrilado.

Los ejemplares que Gordon (1984:60, Lám.

19A) describiera como M. bifurca Powell, prove-

nientes de la cordillera submarina de las islas Ker-

madec difieren considerablemente de las ¡lustra-

ciones de su autor (Powell, 1967: 219-221, fig.

3a-c) y de las que el mismo Gordon (1986: 32,

Lám. 5B) da de ejemplares provenientes de la Isla

Sur de Nueva Zelanda. Así, respecto de los

ejemplares de las Kermadec, el mismo Gordon ya

señala que esos especimenes difieren de los de Po-

well en el diferente desarrollo del gimnocisto, en

el número de espinas orales y en la carencia de

quenozoides. Estas últimas estructuras son muy

abundantes en M. bifurca según Powell. Los

ejemplares de la Isla Sur ilustrados por Gordon

(1986) muestran por primera vez los quenozo-

oides y las avicularias interzoeciales de frontal

cribrilado. Este carácter acerca definitivamente

M. bifurca a M. antarctica pudiendo ubicárselas

dentro de una misma entidad genérica. Los

ejemplares de las islas Kermadec atribuidos a M.

bifurca se acercan más a M. antarctica especial-

mente por su pericisto formado por numerosas

costillas ramificadas. Estas consideraciones lle-

van a proponer un nuevo nombre específico para

esta forma de las islas Kermadec: Klugerella gor-

doni sp. n., cuya terra typica y material típico son

los que señalara Gordon (1984:60, Lám. 19A).

La identificación de ese material tipo es: Holoti-

po NZOI H-590; Paratipo NZOI P-940. (Comu-

nicación personal de Dennis P. Gordon).

b. EL GÉNERO KLUGERELLA Y EL CONCEPTO DE CRIBRIMORFO

Gordon (1986: 32, Lám. 5 B) coloca a Membrani-

porella bifurca en el subgénero Corbulella del gé-

nero Crassimarginatella, criterio que de ninguna

manera se puede compartir aquí. Gordon da co-

mo razón el hecho de que Membranipora corbu-

la, genotipo de su nuevo subgénero Corbulella

presenta avicularias provistas de espinas arque-

adas sobre su opesia, carácter que también

tendrían las avicularias de M. bifurca. Sin embar-

go, hay una diferencia fundamental entre las es-

pinas que rodean la opesia en las especies coloca-

das hasta aquí en Membraniporella más las que

ahora se incluyen en Klugerella gen. nov., co-

380

menzando por Lepralia nitida Johnston, 1838,

especie de tipo de Membraniporella y las de las

especies de Crassimarginatella y en general de las

de la mayoría de los géneros de Anasca que pose-

en espinas periopesiales o periaperturales inclu-

yendo a los Ascophora s. 1. Esta diferencia atañe

al «carácter articulado o no articulado» de las es-

pinas en las especies consideradas. En los géneros

que normalmente los autores han considerado

como Cribrimorfos, el pericisto o techo formado

por espinas cohesionadas de forma variable que

protege a la pared frontal se compone de espinas

o costillas NO ARTICULADAS POR SU BA-

SE. No es éste el caso de las especies del subgéne-

ro Corbulella Gordon, 1984. Sobre la base de este

criterio hay más cercanía entre las especies pro-

vistas de pericistos claramente regulares (Cribri-

morfos) y aquéllas provistas de pericistos irregu-

lares o muy reducidos (Aracnopúsidos, Catenice-

loídeos y formas emparentadas).

Las costillas de los cribrimorfos no parecen

plenamente homologables con las espinas de los

anascos típicos, como Callopora por ejemplo —al

menos con la parte distal de cada espina—, ya

que carecen de la articulación basal típica presen-

te en éste y en los otros géneros de Malacostega.

No obstante, existe la posibilidad de que las cos-

tillas de los cribrimorfos hayan podido de-

sarrollarse 1) a partir de la base de espinas que ha-

yan tenido sus antecesores. Esta base habría po-

dido ensancharse y alargarse hacia arriba y hacia

el centro de la opesia a modo de un proceso que

al crecer y desarrollarse alcanzaría la forma de

una costilla. Argumenta en favor de esta posibili-

dad la presencia de un poro frontal'en la base de

esta extensión —la pelma de los autores— en es-

pecies de Figularia y de otros géneros. (Ver Che-

etham y Cook, 1893: 164, fig. 71). Esto podría

haberse producido a partir de linajes diferentes,

v. gr. Calloporidae, Hincksinidae, Electrinidae,

etc., lo que explicaría la diversidad de avicularias

encontradas en los Cribrimorpha s. 1., y la pre-

sencia de ovicelas endozoeciales o hiperesto-

miales, lo que favorecería la idea de considerar

polifiléticos a los Cribrimorpha. Los grandes pro-

cesos espiniformes orales multifurcados dendrt

formes de Cribilina projecta Waters (Moyano,

1984) tendrían un origen semejante. También

podrían haberse originado 2) como prolonga-

ciones espiniformes laterales del gimnocisto con-

teniendo una extensión tubular de la cavidad ge-

neral (Ver fig. 65 en Cheetham y Cook, 1983).

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

Tal situación se ve en todos los géneros de briozo-

os en los que no existen esas aberturas en la base

de cada costilla, v. gr. Parafigularia, Jollietina,

Cribralaria, etc., y también en especies del género

Beania dentro de los briozoos celularinos y quizá

dentro de varios géneros de Cateniceloídeos (ver

a Gordon, 1984, 1989). Y 3) en el caso de Bellu-

lopora bellula las costillas no corresponden ni a

supuestas bases de espinas agrandadas indicadas

en 1, ni a procesos del tipo señalado en 2, sino

que corresponden a costillas umbonuloides origi-

nadas de dietelas marginales (Moyano, 1984).

Las costillas de Bellulopora de hecho son exten-

siones umbonuloides, esto es, poseen una base

calcárea sobre la que se encuentra una cavidad

celómica en comunicación con el celoma general

y una membrana frontal que la recorre en toda

su extensión (ver Gordon 1984: 18, fig. 2 D, Mo-

yano, 1984: 59-60, figs. 18-20; Banta y Wass,

1979).

Los cribrimorfos se diferencian entonces de

los Aracnopusioídeos y Umbonuloídeos pro-

piamente tales por su extrema regularidad y ra-

dialidad —como es el caso de todos los cribrimor-

fos— en vez de formar un pericisto de factura

irregular como en los primeros y en vez de for-

mar una capa continua de origen próximo lateral

y provista de areolas marginales, como en los se-

gundos.

Pero además de los Cribrimorpha clásicos

señalados más arriba, existen géneros y especies

en los que aparece un “tipo de pericisto” formado

de costillas derivadas de espinas articuladas por

su base y que se unen en cierto grado en la parte

central de ese «pericisto». Tal es el caso de los Ca-

lopóridos Callopora rylandi Bobin y Prenant,

1965; (Prenant y Bobin, 1966: 231, figs. 75, 76),

y Callopora confluens Cook, 1968 (Cook, 1985:

99, fig. 29), Crassimarginatella (Corbulella) spino-

sissima Gordon, 1984, (C. Corbulella) gibba Gor-

don, 1986, y (C. Valdemunitella) hara Gordon,

1986 entre varios de otras familias. La estructura

y relaciones de este tipo de formas ya había lla-

mado la atención desde comienzos de siglo a

muchos autores desde Levinsen (1909), lo que es

revisado por Prenant y Bobin (1966: 565-568).

Teniendo en cuenta lo indicado más arriba y

sin adentrarse en detalle en lo que al origen y re-

laciones filogenéticas se refiere, en los briozoos

provistos de pericisto (pared frontal calcárea de-

sarrollada a partir de espinas O procesos espinosos

por sobre una pared membranosa subyacente) se

381

distinguen los siguientes grupos:

a) Especies con pericisto formado de costas

radiales huecas más o menos fusionadas y provis-

tas en su base de un poro o pelma, atestiguando

quizá su origen en una espina con parte distal ar-

ticulada de cuya base la pelma sería testigo, de-

sarrollado sobre zooides que forman colonias

normalmente incrustantes. Cribrimorfos pelmatí-

feros. V. gr. Figularia s. str., Cribrilaria ?

b) Especies con pericisto formado de costas

radiales huecas más o menos fusionadas despro-

vistas en su base de un poro o pelma, desarrolla-

do sobre zooides que forman colonias normal-

mente incrustantes: Cribrimorfos apelmatíferos;

V. gr. Membraniporella, Parafigularia, Cibrala-

ria, Klugerella gen. nov.

c) Especies con pericisto formado de costas

umbonuloides radiales más o menos fusionadas,

provistas en su base de un poro areolar y de un

canal central, desarrollado sobre zooides que for-

man colonias normalmente incrustantes: Cribri-

morfos umbonuloides. V. gr. Bellulopora, Gephy-

rotes?

d) Especies con pericisto formado de proce-

sos umbonuloides que al fusionarse no dejan hen-

diduras o filas de poros que delimitan costillas, si-

no que un número variable de espacios regulares

o irregulares, desarrollado sobre zooides que for-

man colonias normalmente incrustantes. Aracno-

pusiomorfos. V. gr. Arachnopusia, Exechonella,

Trilaminopora.

e) Especies con pericisto generalmente como en

los grupos a o b, reducido a muy reducido, aun-

que discernible y no recubierto por una capa cal-

cárea umbonuloide, desarrollado en zooides que

forman Zoarios muy especializados arborescentes

y generalmente articulados. Catenicelimorfos. V.

gr. Euthyroides, Costaticella, Pterocella.

f) Especies con pericisto cubierto por una O

dos láminas umbonuloides (como en algunas for-

mas cretácicas, según Lang, 1921) desarrollado

sobre zooides que forman colonias arborescentes,

ramificadas o reticuladas. Bifaxariomorfos. V.

gr. Bifaxaria, Diplonotos. (sensu Gordon, 1988).

g) Especies con pericisto formado por espi-

nas, articuladas por su base, curvadas por sobre

la pared frontal membranosa, más o menos conti-

guas y/o fusionadas. Seudocribrimorfos. V. gr.

Gayana Zool. 55(4), 1991

Callopora rylandi, Bobin y Prenant, y Crassimar-

ginatella (Corbulella) spinosissima Gordon.

Los dos primeros grupos pertenecen a los

Cribrimorpha propiamente tales y sería por el

momento un poco arriesgado sugerir dos taxones

de nivel suprafamiliar para agruparlos, dado que

la presencia de aberturas en la base o recorrido de

las costillas parece ser variable, al menos en las

especies que se consideran congenéricas dentro

de Figularia.

El tercer grupo necesita aún de más estudio,

sobre todo del examen de muchos géneros recien-

tes y fósiles de cribrimorfos s. /. para indagar la

verdadera naturaleza de sus costillas. En todo ca-

so, las costillas de Bellulopora no parecen ser ho-

mólogas a las de los demás cribrimorfos ni a los

procesos de los Aracnopusiomorfos. Su inclusión

en cualquiera de los dos grupos tampoco parece

acertada, dada la diferente arquitectura del peri-

cisto como un todo.

Los aracnopusiomorfos constituyen un gru-

po aparentemente derivado de Anascos que cons-

truyen un pericisto no costulado de manera origi-

nal. El examen de géneros como Arachnopusia y

Trilaminopora sugiere que —al igual que los

cribrimorfos— se trataría de un grupo polifiléti-

co.

Los Catenicelimorfos y los Bifaxariomorfos

pueden haber derivado de grupos de cribrimorfos

que se especializaron grandemente para vivir, los

primeros, en zonas de alta energía poseyendo pa-

ra ello zoarios muy flexibles a través de la inter-

conexión con articulación de nodos uni a trizo-

oidales, y para vivir en las grandes profundidades

formando zZoarios ramificados o retiformes, los

segundos. En Cribrimorfos cretácicos ya exis-

tieron formas que producían otras capas calcáre-

as por sobre el pericisto espinoso (Lang, 1921).

Por último, los seudocribrimorfos, como el

nombre lo indica, sólo parecen superficialmente

cribrimorfos, distinguiéndose de ellos por tener la

articulación basal de las espinas que forman el pe-

ricisto. Así, las especies «cribriformes o cribrimor-

fas» de Crassimarginatella (sensu Gordon,

1984) son sólo eso, mientras que las especies de

Membraniporella como M. bifurca Powell y las

que aquí se integran a Klugerella gen. nov. son

verdaderos cribrimorfos. Sin embargo, no se ajus-

tan a esta definición especies como Beania costa-

ta (Busk) que presentan un «pericisto» claramente

382

costulado derivado de procesos laterales espini-

formes no articulados. En este caso se puede con-

siderar a este pericisto como una adquisición orl-

ginal dentro de un grupo —la familia Beanii-

de— que normalmente no los forma.

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la parte principal).

Zoogeografía de Briozoos chilenos: Moyano, H.I.

ADDENDUM III

Durante el desarrollo de la XXVI Expedición

Antártica Chilena, febrero de 1990, se obtuvo

más de 60 especies de Bryozoa. De éstas son

nuevas para la fauna chilena:

1. Brettiopsis triplex (Hastings, 1943)

2. Fenestrulina rugula Hayward y Ryland,

1990.

3. Smittina glebula Hayward y Thorpe,

1990.

Y, los ejemplares de Figularia spatulata

(Calvet, 1909) (= Cribrilina spatulata Calvet,

1909) muestran avicularias de frontal cribrilado,

las que eran previamente desconocidas.

B. triplex era conocida de fuera de la Tierra

de Oates (69%43'S; 16324'E (Hastings, 1943) y

de la parte sur del Mar de Weddell (López Gap-

pa, 1986). El nuevo hallazgo extiende su distribu-

ción al Mar de Bellingshausen, lo que valida la

suposición de López Gappa de considerarla pro-

bablemente circumpolar. F. rugula, recientemen-

te descrita por Hayward y Ryland (1990) para el

área del archipiélago de las Georgia del Sur fue

hallada cerca de la Isla Rey Jorge en las Shetland

del Sur por el lado que enfrenta al Mar de Drake.

S. glebula también fue hallada en el área de las

Shetland del Sur y sus autores, Hayward y Thor-

pe (1990) la describen para la isla Bouvet.

El hallazgo de avicularias cribriladas en C.

spatulata es en todo semejante al descrito más

arriba para Membraniporella antarctica, tanto

por la novedad de la presencia avicularial y de su

particularísima estructura, así como por no con-

cordar con los caracteres del género Cribrilina ni

con los del género Figularia en el que fue coloca-

da por Livingstone (1928) y Vigeland, 1952. Es-

tos hechos llevan a revisar la posición sistemática

de esta especie y a través de la proposición de un

nuevo género, como se señala seguidamente:

Filaguria n. gen.

DIAGNOSIS

Zoario incrustante. Zooides provistos de un peri-

383

cisto formado por costillas no articuladas por su

base, carentes de perforaciones frontales basales

O distales (pelmata o pelmatidia), separadas por fi-

las de poros y no bifurcadas en su parte distal.

Primer par de costillas no diferente del resto, que

delimitan proximalmente la abertura acampana-

da. Con espinas lateroorales. Ovicela hiperesto-

mial, imperforada, pero con dos áreas de menor

calcificación, a modo de fenestras laterales en el

ectoecio. Avicularias interzoeciales de estructura

semejante a la de los autozooides, con una man-

díbula lingúiforme. Poros de comunicación inter-

zooidal: séptulas.

ETIMOLOGÍA

El nombre genérico resulta de un anagrama de

Figularia, género al que el nuevo taxón se parece.

EspeciE tipo: Cribrilina spatulata Calvet, 1909.

OBSERVACIONES

En un estudio monográfico de los cribrimorfos

chilenos, Moyano (1984) colocó a esta especie en

el género Figularia en atención a la estructura de

sus ovicelas hiperestomiales provistas de un par

de depresiones laterales conspicuas. Sin embargo,

ni Calvet ni los autores posteriores indicaron la

presencia de avicularias. Aquí se demuestra que

existen y que son primitivas, en todo similares a

un zooide, incluyendo el pericisto, y con una

mandíbula lingúiforme fácilmente derivable del

opérculo autozooidal. No obstante, las avicula-

rias de las especies descritas de Figularia s. str.

son ya especializadas, sin pericisto, con grandes

mandíbulas lingúiformes o pequeñas y triangula-

res, como en el caso de la única especie antártica

de este género, Figularia discors, Hayward y

Taylor, 1984. Como Cribrilina spatulata Calvet

no puede ser incluida en Figularia se ha propues-

to el nuevo género Filaguria.

Con este nuevo género, los cribrimorfos an-

tárticos son sólo 4 especies pertenecientes a

cuatro géneros distintos.

Dendroperistoma projecta (Waters, 1904).

Gayana Zool. 55(4), 1991

LAmINA VIII Filaguria spatulata (Calvet, 1909).

AL. Zooides no Guicelados y ovicelados en vista frontal. x 100.

AD. Ovicela. Nótese las dos aberturas ovales del ectocisto, presentes típicamente en las especies del género Figularia x 143.

MI. Avicularia interzoecial. Son notorios los gruesos cóndilos proximales para la articulación de la mandíbula. x 127.

MD. Avicularia de área mandibular proporcionalmente mayor que en MI. También el número de costillas frontales es ma-

yor y más regular. x 90.

ABI. Pericisto de la avicularia de MD. Nótese los poros terminales de las costillas. x 230.

ABD. Cámara y poros de comunicación interno (el menor) y externo (el mayor) sita en las paredes zoeciales laterales. x

1120.

384

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

Gayana Zool. 55(4), 1991

LAMINA IX. Filaguria spatulata (Calvet, 1909).

Al. Pericisto en vista frontal externa. Las costillas se tocan en el centro aparentemente sin fusionarse, ya que son perfecta-

mente discernibles sus limites. Y muestran procesos laterales que tocan a otros semejantes de las costillas vecinas. x 253.

AD. Area central de pericisto mostrando las uniones intercostales laterales y en el centro los poros terminales (distales) de

cada costilla. x 506.

MI. Zona de choque de los extremos terminales de las costillas, las que muestran sus límites y poros. x 1012,

MD. Pericisto mirado desde abajo. En el borde libre de las costillas anteriores se ve aberturas que corresponden a los proce-

sos laterales de unión intercostal. x 280.

ABI. Bases de dos costillas desde el interior del zooide. x 840.

ABD. Base de una costilla desde el interior del zooide. Al igual que en la figura anterior, se ve el poro basal que comunica el

interior hueco de la costilla con el celoma Zooidal. x 1260.

386

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.L

Gayana Zool. 55(4), 1991

Klugerella antarctica (Kluge, 1914) n. gen,

n. comb.

Filaguria spatulata (Calvet, 1909) n. gen., n.

comb.

Figularia discors Hayward y Taylor, 1984.

Filaguria spatulata Calvet, 1909) n. comb.

Láms. VII y IX

Cribrilina spatulata Calvet, 1909: 9, Lám. 2, figs.

1-3. Thornely, 1924: 10.

Figularia spatulata (Calvet): Livingstone, 1928:

47, Lám. 2, figs. 6; Vigeland. 1952: 8; Moyano,

1984: 55, Figs., 10, 36, 37.

DIAGNOSIS

Zoario incrustante, unilaminar, pluriserial, blan-

co amarillento. Zooides grandes alargados, sepa-

rados por surcos bajos; pared frontal gimnocísti-

ca formada por 11 a 17 costillas aplastadas que se

fusionan en la línea media y lateralmente,

quedando separadas por hendiduras alargadas;

gimnocisto bien desarrollado, pero variable en su

extensión proximal; las costillas que forman el

borde proximal de la abertura son más anchas y

más fuertes y delimitan un pequeño seno central

en V por el lado proximal de la abertura zoecial.

Abertura zoecial casi idéntica en zooides fértiles e

infértiles, con dos pequeños dentículos látero-

proximales; con 4 espinas orales cilíndricas en los

zooides infértiles y con 2 proximales espatuladas

en los fértiles. Avicularias interzoeciales, casi del

tamaño de los autozooides, con su mismo pericis-

to y con una mandíbula lingúiforme dos veces

más larga que el opérculo zoecial. Ovicela hipe-

restomial grande, redondeado-alargada a mitri-

forme, con dos áreas ectocísticas laterales no cal-

388

cificadas y en forma de lágrima. Con dos séptu-

las uníporas en cada pared lateral y otra en la dis-

tal.

DISTRIBUCIÓN

Especie antártica endémica. Sector del Kaiser

Wilhelm y Tierras de Victoria y Adelia (Thor-

nely, 1924; Livingstone, 1928); sector del Mar de

Bellingshausen (Calvet, 1909; Vigeland, 1952)

Islas Heard y MacDonald (d'Hondt, 1979); Islas

Shetland del Sur (Moyano, 1984).

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the Norwegian Antarctic Expeditions, 1927-1928, 3(34):

15 págs., 3 láms.

Zoogeografía de Briozoos chilenos: MOYANO, H.I.

ADDENDUM IV

Casi al momento de terminar este trabajo se reci-

bieron dos trabajos sobre Microporélidos (18 es-

pecies) y Esmitínidos (26 especies) de las regiones

antártica y subantártica (Hayward £ Ryland,

1990; Hayward 8 Thorpe, 1990). la mayoría de

las nuevas especies de esmitínidos han sido

descritas de las cercanías del Cabo de Hornos del

Estrecho de Magallanes y de Las Malvinas, por

lo que podemos suponer casi con certeza que

también deben hallarse en aguas chilenas, dada la

similitud hidrológica alrededor del extremo sur

de América del Sur.

Sin embar go, de ellas las siguientes están po-

sitivamente dentro de aguas chilenas, de acuerdo

a las coordenadas y/o localidades indicadas por

esos autores.

1. Smittina incernicula Hayward £ Thorpe,

1990; Fuera de las islas Clarence y Elefante

(Antártica) 60% 49,48; 52% 40"W, 490-610

2. Smittina jacobensis (Busk, 1884); Estrecho

de Magallanes, Bahía Fortescue, 0-5 m.

3. Smittina leptodentata Hayward 8 Thorpe,

1990; Extremo occidental del Estrecho de

Magallanes, 66 m.

4. Smittina pocilla Hayward $: Thorpe, 1990;

Cerca de las islas Piloto Pardo (Antártica),

61%20,8'S; 54% 04,25 180-210 m.

S. Smittoidea bulbosa Hayward £ Thorpe,

1990; Fuera del Cabo de Hornos, 56%

ION OIE MA

6. Smittoidea pachydermata Hayward £ Thor-

pe, 1990; Fuera del Cabo de Hornos; 56

19,58; 67% 9,75W; 121 m.

7. Calloporina patagonica Hayward 8 Ryland,

1990. Extremo occidental del Estrecho de

Magallanes, 66 m.

8. Fenestrulina crystallina Hayward «

389

Ryland, 1990; Estrecho de Bismark, Archi-

piélago de Palmer (Antártica), 315 m.

9. Fenestrulina majuscula Hayward,

Estrecho de Magallanes.

10. Microporella personata(Busk, 1854); Región

Magallánica.

1980;

OBSERVACIONES

La mayoría de estas especies son nuevas, aunque

el material en que se basan había sido recolectado

por los barcos del Discovery Committee en las

primeras décadas de este siglo. La reciente aper-

tura de esas inmensas colecciones al estudio por

investigadores británicos ha permitido acrecentar

las briozoofaunas subantárticas y antárticas. De

paso, ha confirmado la existencia y clara separa-

ción de la Briozoofauna Magallánica (sensu Mo-

yano, 1982) de las del Arco de Escocia y de la

Antártica propiamente tales (Hayward y Thorpe,

1990; Hayward y Ryland, 1990).

S. jacobensis, a pesar de haberse descrito en

los Resultados de la Expedición del Challenger

(Busk, 1884) no había sido señalada con certeza

para las aguas chilenas. M. personata, especie

descubierta y descrita aún antes que S. jacoben-

sis, también ha sido confirmada para la Región

Magallánica y recientemente ha sido hallada en

las cercanías de Concepción (ca. 37%S) (observa-

ción personal).

BIBLIOGRAFIA

HAYWARD, P.J. y J.P. THORPE, 1990. (Ver cita en la bibliogra-

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HAYWARD, P.J. y J.S. RYLAND, 1990. (Ver cita en la

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principal).

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Gayana Zool. 55(4): 391-396, 1991

ISSN 0016-531X

A NEW SPECIES OF TROPIDURINE LIZARD (SQUAMATA:

TROPIDURIDAE) FROM LOS ANDES OF NORTHERN CHILE

UNA NUEVA ESPECIE DE LAGARTO TROPIDURINO (SQUAMATA:

TROPIDURIDAE) DE LOS ANDES DEL NORTE DE CHILE.

Ana Young-Downey* and Jorge Moreno**

ABSTRACT

A new species of lizard, Liolaemus juanortizi, is described

from the Puneña province of northern Chile. This species is

distinguished by its juxtaposed weakly keeled dorsal scales, a

relatively short hindlimb (when limb adpressed fourth toe

does not pass shoulder), smooth temporal scales, a gray

ventral color in females, and a brilliant black ventral color in

adult males.

KEYWORDS: Liolaemus juanortizi n. sp., Reptilia,

Tropiduridae, Chile.

INTRODUCTION

The genus Liolaemus Wiegmann, 1834 has

* Department of Biology, University of Miami, P.O. Box

249118, Coral Gables, Fl. 33124, U.S.A.

** Museo Regional de Atacama, Casilla 134, Copiapó, HI

Región, Chile.

RESUMEN

Se describe una nueva especie chilena de tropidurino,

Liolaemus juanortizi, de la provincia Puneña de la Cordillera

de los Andes, al este de la 111 Región, en la Quebrada Aguas,

Blancas, a 3.800 m de altura. La nueva forma se caracteriza

por poseer las escamas dorsales juxtapuestas y levemente

carenadas, la extremidad posterior relativamente corta

(cuarto dedo del pie no sobrepasa el hombro), las escamas

temporales lisas, y una coloración del vientre gris en

hembras y machos juveniles y negra brillante en machos

adultos.

PALABRAS CLAVES: Liolaemus jaunortizi nm. sp., Reptilia,

Tropiduridae, Chile.

reached a tremendous species diversificacion

within South America —no less than 100 species

are recognized (Cei, 1986). During the course of

field research sponsored in 1988 by the Museo

Regional de Atacama to Río Aguas Blancas

(27*37'S; 6931"W), Copiapó, IM Región, Chile

(Fig. 1), Jorge Moreno collected specimens of a

undescribed tropidurine lizard.

Gayana Zool. 55(4), 1991

262

ARGENTINA

PACIFIC OCEAN

SCALE

1:4,500,000

30%

. Jl

Al Ú

FIG. 1. Distribution (closed square) of Liolaemus juanortizi in

Chile.

A detailed study of the specimens revealed

that they represent a new species of the Liola-

emus. Because viewpoints about continued

growth throughout life in reptiles varies (see

Andrews, 1982 and Porter, 1972) body propor-

tions rather than actual measurements were pre-

fer for making comparisons between samples and

species. Herein we describe this species as:

Liolaemus juanortizi sp. nov.

HOLOTYPE

Museo Regional de Atacama (MRA) 0139, an

adult male from Quebrada Aguas Blancas, 3800

m, Copiapó, III Región, Chile, collected by Jorge

Moreno on December 1988.

PARATYPES

MRA 0140, an adult female; MRA 0145, a juve-

nile female; MRA 0148, a juvenile male; MRA

0149, an adult male; MRA 0150, an adult fema-

le. All collected by Jorge Moreno at the same lo-

cality and date as the holotype.

392

DIAGNOSIS

A moderate Liolaemus which may be distin-

guished from other Liolaemus by the following

combination of characters: (1) juxtaposed weakly

Keeled dorsal scales; (2) smooth temporal scales;

(3) a relatively short hindlimb (when limb adpres-

sed, fourth toe does not pass shoulder); and (4) a

gray ventral color in adult females and juveniles,

and a brilliant black ventral color in adult males.

DESCRIPTION OF HOLOTYPE

Body stout and compressed dorsoventrally, when

hindlimb adpressed fourth toe does not pass

shoulder; head length about one-fifth of snout-

vent length (SVL); tail 1.5 times longer than SVL

(Table [); neck folds well developed; antehumeral

fold present; gular fold absent; rostral scale two

times wider than high; two post-rostral scales;

nasal scales in contact with rostral and separated

from supralabials by one scale; nostrils smaller

than the nasal scales and opening anterolaterally

at a point one-third the distance between eye and

tip of snout; 4 internasals; 2 unpair scales on the

snout surrounded by 2 paired scales; frontal

undivided; 2 prefrontals and 2 postfrontals;

interparietal pentagonal with a small pineal eye

and of the size of each parietal; prefrontals and

frontal of similar size; postfrontals half the size of

frontal; 3 enlarged supraoculars on the left side

and 3 on the right side, separated from

superciliaries by 2 rows of small scales; 6

elongated, overlapping superciliaries on the left

side and 7 on the right side; 11 palpebral scales;

subocular scale enlarged, undivided, and

separated from supralabials by a single row of

scales; 5 supralabials and 5 infralabials on each

side; temporal scales smooth; ear opening

elliptical with 3 prominent tympanic scales;

posterior border of ear with granular scales;

nuchal scales weakly keeled, subimbricated and

smaller than dorsals; mental as wide as rostral,

but higher and in contact with 4 scales; 2

divergent rows of 4 postmentals; gulars smooth,

imbricated and smaller than ventral scales; side

of neck with smooth granular scales; dorsal scales

ovoid, juxtaposed and slightly keeled; scales on

side of body smaller than dorsals, smooth and

yuxtaposed; ventral scales squarish, same size as

dorsal, smooth and imbricated; upper caudal

Liolaemus juanortizi nm. sp.: YOUNG-DOWNEY, A. £ J. MORENO.

scales triangular, keeled and imbricated; distal

caudal scales squarish, keeled and imbricated;

ventral caudal scales triangular, smooth and

imbricated; dorsal forelimb scales slightly keeled

and imbricated, with an apical scale pit; ventral

forelimb scales granular on the proximal part and

ovoid on the distal part; hindlimb scales similar

to forelimb scales; ventral scales of the hand and

foot tricarinated; scales around middle body 59;

subdigital lamellae of the fourth finger 20,

tricarinated; subdigital lamellae of the fourth toe

25, tricarinated; 4 anal pores.

TABLA I. Measurements (mm) (following Peters, 1964, system of measurements) and meristic characters of Liolaemus

juanortizi.

Holotype

MRA 0139 MRA 0140. MRA 0145 MRA 0148 MRA 0149 MRA 0150

Character

Head length 21.75 16.80

Head width 18.90 14.40

Head height 12.20 9.05

SVL 94.40 76.25

Axilla-groin length 46.75 38.85

Forelimb length 32.35 24.90

Hindlimb length 51.65 40.00

Ear-groin length 63.10 52.25

No. scales around

middle of body 59 57

Subdigital lamellae

on 4th finger 20 20

Subdigital lamellae

on 4th toe 25 26

Tail length 155.00 o

Paratypes

10.90 14.00 ESOS 16.90

9.15 11.00 18.20 13.50

6.85 7.85 12.80 8.45

46.70 61.00 94.25 84.10

23.20 29.50 46.05 45.05

16.00 21.80 49.00 26.35

27.85 36.85 30.40 41.85

30.90 41.50 62.10 59.60

53 S6 59 55

20 24 22 23

26 26 29 29)

In life, the dorsum is brown with no pattern

of marks or bands; sides of body gray; dorsal

surface of limbs brown with small irregular white

spots; venter brilliant black; ventral surface of

limbs and tail gray with irregular black spots

(Fig. 2).

VARIATION

Table I presents variation on morphometric

characters in the specimens collected (holotype

and paratypes), and variation in lepidosis as well.

Table II summarizes the data of Table las ranges

of variation for ratios computed on various fe-

atures of the holotype and paratypes.

Among the paratypes, there are 2-3 unpaired

scales on the snout; 3-4 enlarged supraoculars;

6-7 superciliaries; 5-6 supralabials; 5-6

infralabials; 3 tympanic scales; 3-4 rows of post

mentals; 53-59 scales around middle body; 20-24

subdigital lamellae on the fourth finger and 26-

29 subdigital lamellae on the fourth toe. Frontal

393

is divided on MRA 0140 and MRA 0150. MRA

0149 (adult male), MRA 0140 and 0150 (adult

females) and MRA 0145 (juvenile female) have a

well developed auricular scale. The adult male

(MRA 0149) and juvenile male (MRA 0148) has

4 and 3 orange anal pores, respectively.

Coloration in life of MRA 0140, MRA 0145

and MRA 0148 is brown on the dorsum and

gray on the venter. MRA 0149 venter's is

completely black. In MRA 0145 three dorsal

black stripes extend from behind the head to the

distal portion of the tail. The central (vertebral)

stripe is a continous band. The two lateral stripes

are discontinues bands, formed by two black

spots surronded of white which converge into

one black spot at the begining of the tail. In the

juvenile male only traces of lines remain.

Irregular black spots are present on the venter

and ventral surfaces of the limbs and tail of the

adult females and juveniles female and male. A

juvenile male (MRA 0148) has the gular and

ventral regions almost completely black.

Gayana Zool. 55(4), 1991

FIG. 2. Liolaemus juanortizi, paratype MRA 0140, and adult female, 76 mm SVL.

TABLA II. Comparison of ranges of variation for ratios computed on morphometric features and scutellational characters

of Liolaemus juanortizi, Liolaemus lorenzmulleri and Liolaemus paulinae (from Hellmich, 1950 and Donoso-Barros, 1961

respectively). Numbers within parenthese represent means.

L. juanortizi L. lorenzmulleri L. paulinae

Character (n=6) (n=4) (n=10)

Head length/SVL 0.20-0.23 0.22-0.24 0.24-0.30

(0.22) (0.23) (0.27)

Head width/SVL 0.16-0.20 0.19-0.21 0.19-0.25

(0.19) (0.20) (0.22)

Head height/SVL 0.10-0.15 0.14-0.17 0.13-0.20

(0.13) (0.15) (0.16)

Forelimb length/SVL 0.31-0.36 0.35-0.41 0.32-0.49

(0.33) (0.38) (0.39)

Hindlimb length/SVL 0.50-0.60 0.63-0.67 0.46-0.78

(0.55) (0.65) (0.63)

Forelimb length/head length 1.41-1.56 1.47-1.77 1.20-1.62

(1.50) (1.68) (1.43)

Hindlimb length/head length 2.27-2.63 2.63-3.04 1.77-2.60

(2.45) (2.82) (2.31)

Dorsal scale disposition juxtaposed imbricated =

Scales on dorsal forelimb slightly keeled Keeled Keeled

Scales on dorsal hindlimb slightly keeled Keeled Keeled

394

Liolaemus juanortizi n. sp.: YOUNG-DOWNEY, A. £ J. MORENO.

ETYMOLOGY:

The present species is dedicated to Dr. Juan C.

Ortiz, herpetologist and friend, whose

contribution to the taxonomy and knowledge of

the Chilean herpetofauna has been considerable.

DISTRIBUTION:

This species is known only from the type locality.

REMARKS:

Liolaemus juanortizi inhabits what has been

called the Puneña Province by Cabrera and

Willink (1980), which is characterized by a dry

and cold climate with large temperature

fluctuations. The dominant vegetation are small

shrubs (Ephedra sp., Adesmia sp. and Critaria

andicola), between which is bare soil most of the

year. L. juanortizi uses these shrubs to hide even

though it prefers to do it under rocks. This lizard

is easy to capture when approach it does not

escape. L. juanortizi is omnivorous. It eats

insects (ants, homoptera and hemiptera) and

vegetation (mainly leaves, flowers and friuts).

Sympatric with L. juanortizi, we found another

tropidurine lizard which is being described by

Ortiz (Moreno pers. comm.)

DISCUSSION

Several species groups have been suggested for

the different Liolaemus species (Cei, 1979, 1986;

Laurent, 1983, 1984, 1985; Ortiz, 1981) based on

overall similarity, recognized subspecies and

discriminant analysis of morphometric data.

Synapomorphic states (shared derived

homologies) for most of the suggested groups,

except the subgenus Ortholaemus (Laurent,

1984), are not available; therefore, placement of

L. juanortizi as into one of these groups seems

premature:

Based on the distribution of £L. juanortizi and

overall similarity of various features between L£.

juanortizi and other Liolaemus species (Cei,

1986; Donoso-Barros, 1966; Peters and Donoso-

395

Barros, 1970), we decided to compare L.

juanortizi with L. lorenzmulleri and L. paulinae.

We have not had the opportunity to examine

the type species of L. lorenzmulleri and L.

paulinae; therefore, to distinguish them from

Liolaemus juanortizi, we have relied on their

original descriptions (Hellmich, 1950; Donoso-

Barros, 1961, respectively), and on descriptions

and notes provided in later publications (Donoso-

Barros, 1966; Peters and Donoso-Barros, 1970).

Liolaemus ¡juanortizi differs from L.

lorenzmulleri in having juxtaposed slightly

keeled dorsal scales (an undescribed character for

£. paulinae). L. juanortizi may be distinguished

from £. paulinae in having enlarged supraocular

scales. Temporals scales are weakly keeled in L£.

lorenzmulleri and L. paulinae, but smooth in L£.

juanortizi. Liolaemus juanortizi differs also from

L. paulinae in having an antehumeral fold.

Morphometric characters also allowed

differentiate Liolaemus juanortizi from L.

lorenzmulleri and L. paulinae. L. juanortizi

differs from L. lorenzmulleri in having a

relatively shorter hindlimb (hindlimb length/head

length), and from £. paulinae in having a

relatively smaller head (head length/SVL; head

width/SVL) (Table II). £L. juanortizi reaches a

larger adult length (76-94 mm SVL) than L.

paulinae (40-52 mm SVL) and L. lorenzmulleri

(57-79).

Differences in coloration distinguish

Liolaemus juanortizi from the other two taxa.

The venter in £L. /orenzmulleri is brownish-

yellow. In £. paulinae the venter is grayish white

with reddish tints. L. lorenzmulleri has the

ventral surface of the limbs brownish yellow; in

L. juanortizi this region is gray with irregular

black spots. The juveniles of L. paulinae have

two dorsal pale bands at each side of the dorsum;

in L. juanortizi, the juveniles have three dorsal

black stripes along the dorsum and tail.

ACKNOWLEDGMENTS

I am grateful to J. Slowensky who kindly

reviewed the manuscript and offered helpful

suggestions. 1 thank J. M. Savage for his

technical assistance. The Museo Regional

Atacama loan the specimens used in this study.

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20.

218

REGLAMENTO DE PUBLICACION DE GAYANA

La revista Gayana, dedicada al distinguido naturalista francés Claudio Gay, es el órgano oficial de Ediciones de la

Universidad de Concepción, Chile, para la publicación de resultados de investigaciones originales en el área de las

Ciencias Naturales. Está compuesta de las series Botánica, Oceanología y Zoología.

Estas series son periódicas de un volumen anual compuesto por dos números.

Gayana recibe trabajos realizados por investigadores nacionales y extranjeros, elaborados según las normas del pre-

sente reglamento; la recepción es permanente. El valor de la publicación es de US$ 20.00 por página (con láminas en

blanco y negro) y de US$ 30.00 por página (con láminas en color).

Gayana acepta trabajos escritos en idioma español o inglés. La publicación en otros idiomas deberá ser consultada

previamente al Director.

El manuscrito debe ser entregado en triplicado; una de las copias llevará las figuras originales.

El Director de la revista, asesorado por el Comité de Publicación, se reserva el derecho de aceptar o rechazar el ma-

nuscrito.

El manuscrito será enviado a pares para su revisión técnica.

La primera prueba de imprenta será enviada al autor principal para su corrección antes de la impresión definitiva. Si

ello fuere imposible o dificultoso, la corrección será realizada por el Comité de Publicación.

Los nombres científicos y las locuciones latinas serán las únicas que irán subrayadas en el texto. La primera vez que

se cite un organismo deberá hacerse con su nombre científico completo (género, especie y autor).

Las medidas deberán ser expresadas en unidades del sistema métrico; si fuera necesario agregar medidas en otros sis-

temas, las abreviaturas correspondientes deben ser definidas en el texto. Decimales con coma, no punto (Ejemplo:

0,5).

Las citas en el texto deben incluir nombre del autor y año [Ejemplo: Smith, J.G. (1952)]. Si hay varios trabajos de un

autor en un mismo año, se citará con una letra en secuencia adosada al año (1952a). Cuando hay más de dos autores

todos los nombres serán citados en la primera mención [Ejemplo: Smith, J.G., P.J. Jones and W.E. Williams (1981);

las referencias posteriores serán: Smith et al. (1981)].