FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES

Y OCEANOGRAFICAS

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA

Andrés O. Angulo

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR

Oscar Matthei J.

DIRECTOR IMPRESION

Jorge N. Artigas

REPRESENTANTE LEGAL

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PROPIETARIO

Universidad de Concepción

DOMICILIO LEGAL

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EDITOR EJECUTIVO SERIE ZOOLOGIA

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Universidad de Concepción, Chile.

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Muséum National d' Histoire Naturelle, Francia.

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Universidad de Concepción, Chile.

NELSON PAPAVERO

Universidade de Sáo Paulo, Brasil.

GERMAN PEQUEÑO R.

Universidad Austral de Chile, Chile

LinDA M. Prrkin

British Museum (Natural History), Inglaterra.

JAIME SOLERVICENS

Universidad Metropolitana de Ciencias de la

Educación, Chile.

HAROLDO TORO

Universidad Católica de Valparaíso, Chile.

W. CALvIN WELBOURN

The Ohio State University, U.S.A.

Indexado en Bulletin Signaletique (Abstract, CNRS, Francia), Pascal Folio (Abstract, CNRS, Francia); Periodica (Index Latinoamericano, México);

Marine Sciences Contents Tables (MSCT, Index FAO); Biological Abstract (BIOSIS);¡Entomology Abstract (BIOSIS); Zoological Records (BIO-

SIS); Ulrik's International Periodical Directory; Biological Abstract.

Diseño y diagramación

Patricio Araneda G.

ISSN 0016-531X

CANTAN, DONDE) GA

VOLUMEN 538 NUMERO 1 1994

CONTENTS

ITUARTE, CRISTIAN F. Eupera guaraniana n. sp. (Pelecypoda:

Sphaeriidae) from the Uruguay River, ArgentiNa ...ooococnncccnccccconccnnno: 1

MARTINEZ, RODRIGO L., F.E. LLANOS AND A. QUEZADA. Samastacus

araucanius (Faxon, 1914): Morphological aspects of a new record for

CilenCerustacea Decapoda Parastacidac)M. AI US 9

PEREDO, A.A., R.L MARTINEZ, P.M. AQUEVEQUE AND M.E.

CASANUEVA. Presence of Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794)

in Actinidia chinensis Planch “kiwi” from Chile and redescription of

MmemalertAcariCheyletidac)resutais IPC, SA) AN 17

OLIVAREs, T.S. Systematic and phylogeny of the species of genus

Scania n. gen. (Pseudoleucania in part) (Lepidoptera:Noctuidae) of

hetAndineansPatagomian subregion +". IAE OA. TT 27

CASANUEVA, M.E., A. BERRIOS, A.A. PEREDO AND R.I. MARTINEZ.

Mites associated on horses stables 1. Androlaelaps casalis (Berlese),

Haemogamasus horridus Michael and Proctolaelaps pygmaeus '

(Muller), the first record for Chile and redescription of the male

ficariiMesostiemata)ens E O 0 63

SuTTON, C.A. Studies on the nematode parasities of Argentine

Crec de e 73

GALLARDO, C.S. 8 K. GonzaLEz. Egg mass and intracapsular deve-

lopment of Xanthochorus cassidiformis (Blainville, 1832)

(Gastropoda, Muricidae) from the South Coast of Chile.................. 81

BARRIGA, J.E. % L.E. PEÑA. New species of Cerambycidae

(Coleoptera) from Chile and some SynonyMiES .cccoocccccccoonionnnncnncnnnnoos 93

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

ISSN 0016-531X

ENANA ZODILOGIA

VOLUMEN 58 NUMERO 1 1994

CONTENIDO

ITUARTE, CRISTIAN F. Eupera guaraniana n. sp. (Pelecypoda:

Sphaeriidas) del Río Uruguay, Areentina tot tii 1

MARTINEZ, RODRIGO I., E. LLANOS AND A. QUEZADA. Samastacus

araucanius (Faxon, 1914): Aspectos morfológicos de un nuevo regis-

tro para Chile (Crustacea: Decapoda: Parastacidae) ...ooooonnnnccnnnnnccnn... 9

PEREDO, A.A., R.I. MARTINEZ, P.M. AQUEVEQUE AND M.E.,

CASANUEVA. Presencia de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw,

1794) en Actinidia chinensis Planch “Kiwi” en Chile y redescripción

delimacho(Acart: Cheyletidac) ooo Loa 17

OLIVARES, T.S. Sistemática y filogenia de las especies del género

Scania n. gen. (Pseudoleucania in part) (Lepidoptera:Noctuidae) de

lafsubresión Andino-Patagónica tai ei 27

CASANUEVA, M.E., A. BERRIOS, A.A. PEREDO AND R.I. MARTINEZ.

Acaros asociados a equinos estabulados I. Androlaelaps casalis

(Berlese), Haemogamasus horridus Michael y Proctolaelaps pyg-

maeus (Muller), primer registro para Chile y redescripción de los

machos ((Acari: Mesostiemata) o ectcao. ooo ad. toreo Ea 63

SurTON, C.A.. Nematodos parásitos de roedores Cricetidae de la

A o acacia eceacos 1

GALLARDO, C.S. % K. GONZALEZ. Ovipostura y desarrollo intracap-

sular de Xanthochorus cassidiformis (Blainville, 1832) (Gastropoda,

Muncidae) de la Gosta Sur de Chile da po toda 81

BARRIGA, J.E. 8% L.E. PEÑA. Nuevas especies de Cerambycidae

(Coleoptera) de Chile y algunas SinONiMIAS ....oooocnoonnnnonnonnonnonnanocnnn 93

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY, Hist. de Chile, 1:14 (1847)

Portada: Epífisis podial de Scania strigigrapha (Hampson).

(ver pág. 57)

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE IMPRESOS ANDALIEN

CONCEPCION, CHILE

EN EL MES DE JUNIO DE 1994

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

PARA EDICIONES UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

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Gayana Zool. 58(1): 1-7, 1994

ISSN 0016-531X

EUPERA GUARANIANA N. SP. (PELECYPODA: SPHAERIIDAE) DEL RIO

URUGUAY, ARGENTINA

EUPERA GUARANIANA N. SP. (PELECYPODA: SPHAERIDAE) FROM

THE URUGUAY RIVER, ARGENTINA

Cristián F. Ituarte*

RESUMEN

Se describe una nueva especie del género Eupera

Bourguignat, 1854; Eupera guaraniana n. sp. del río

Uruguay, provincia de Entre Ríos, Argentina. Respec-

to de la condición propia de las especies conocidas del

género Eupera, las proporciones corporales de esta

nueva especie muestran un principio de alteración en

relación a un punto de fijación medio ventral. El con-

torno valvar subtrapezoidal, el gran desplazamiento

del umbo hacia la región anterior reducida, y el impor-

tante desarrollo de la región posterior, ambos determi-

nados por la existencia de un anclaje firme y

permanente provisto por un biso fuerte, son las carac-

terísticas diagnósticas básicas de esta nueva especie.

Los poderosos retractores del pie funcionan como re-

tractores bisales asegurando al animal fuertemente so-

bre sustratos duros, contra la fuerza de arrastre de las

corrientes de agua. Otros caracteres diagnósticos son:

aparato charnelar con diente cardinal derecho bien de-

sarrollado y periostraco ornamentado con hileras ra-

diales de papilas triangulares y papilas menores

esparcidas sin orden entre ellas.

PALABRAS CLAVES: Pelecypoda, Taxonomía, Sphaerii-'

dae, Argentina.

INTRODUCCION

La primera especie del género Eupera des-

cripta para la cuenca parano-platense fue Eupera

platensis Doello-Jurado, 1921. Desde entonces se

han agregado unas pocas nuevas especies, más

“Departamento Zoología Invertebrados, Museo de La

Plata, 1900 La Plata, Argentina.

ABSTRACT

A new species belonging to the genus Eupera Bour-

guignat, 1854; Eupera guaraniana n. sp. from Uru-

guay river, Entre Rios province, Argentina, is here

described. This new species differs from other known

species of the genus by showing an alteration in body

proportions respect to a mid-ventral fixing point, that

resembles the facts that evolutionaryly leaded to the

bivalve heteromyarian condition. The greater displace-

ment of beaks towards the reduced anterior region and

the enlargement of the posterior end, both determined

by the existence of a firm attachment provided by a

strong byssus and determining a characteristic sub-tra-

pezoidal or triangular shell-shape, are the major diag-

nostic features of this new species. The strong foot

retractors act as byssus retractors securing the animal

firmly to hard substrata against water current forces.

Hinge apparatus with a well developed right cardinal

tooth, and periostracum sculptured with radial rows of

triangular papilae and minor papilae sparced without

definite pattern among them, are also diagnostic.

KeYworbs: Pelecypoda, Taxonomy, Sphaeriidae, Ar-

gentina.

debido a lo escaso de los estudios referidos al gé-

nero que por una real pobreza en la composición

específica del taxón genérico.

Klappenbach (1962) describe E. doellojura-

doi procedente de puerto Platero (departamento

Colonia, R.O.Uruguay) sobre el Río de La Plata

y Salto Chico en el río Uruguay, frente a la ciu-

dad de Salto (R.O.Uruguay). Ituarte (1989) des-

cribe Eupera iguazuensis del río Iguazú, Misiones,

Argentina. Finalmente, Ituarte y Dreher-Mansur

(ms) procedente del mismo río Iguazú, describen

Eupera elliptica.

Gayana Zool 58(1), 1994

El género Eupera resulta un grupo de interés

faunístico y biogeográfico dentro de la malacofau-

na dulceacuícola, dada su casi exclusiva represen-

tación en las regiones Etiópica y Neotropical. En

su distribución norte, ingresa en la región Neárti-

ca, ocupando principalmente la zona costera de la

vertiente hidrográfica oriental hasta el estado de

Kansas (Heard, 1965; Mackie $z Huggins, 1976).

En el presente trabajo se describe una nueva

especie del género Eupera procedente del río

Uruguay frente a la localidad de Colón, provincia

de Entre Rios (Argentina). Se aportan datos refe-

ridos a la magnitud de las respuestas que en la

morfología de conchilla y partes blandas impo-

nen las particulares condiciones de sustrato y di-

námica hídrica como determinantes del desarrollo

de un biotipo epifaunal adherido por el biso en

forma permanente.

MATERIAL Y METODOS

Los relevamientos a partir de los que se

efectúa la presente descripción provienen del río

Uruguay, frente a la localidad de Colón, provin-

- cla de Entre Ríos, Argentina (58” 10” W, 32* 15” S).

Las muestras fueron obtenidas durante ba-

jantes pronunciadas del río, que habitualmente

tienen lugar en los meses de verano (las fechas

de colecta fueron: marzo de 1986 y 19-1-89). En

estas condiciones resulta accesible el sustrato ro-

coso, constituido por conglomerados silíceo-fe-

rruginosos. La colecta de ejemplares se efectuó a

profundidades comprendidas entre los 0,70 y 1,5

metros. Los ejemplares de Eupera que se locali-

zan en grietas o hendeduras de las rocas firme-

mente adheridos por sus filamentos bisales,

fueron separados manualmente de fracciones de

sustrato recogido del lecho del río.

Se estudiaron un total de 65 ejemplares. Las

medidas de longitud (largo máximo, altura máxi-

ma y espesor máximo) fueron tomadas en un mi-

croscopio estereoscópico Wild M8, provisto de

micrómetro ocular.

RESULTADOS

Eupera guaraniana n. sp.

Figs. 1-13

DrAGNOSsIs: conchilla mediana a grande den-

tro del género. Contorno valvar subtrapezoidal,

desplazándose el punto de máxima altura hacia el

extremo posterior de la conchilla. Borde inferior

escasamente curvado hasta casi recto. Umbos no

inflados, bajos, marcadamente desplazados hacia

el extremo anterior ubicándose entre el 14 y 26%

del largo máximo. Charnela bien desarrollada,

según la fórmula del género, cardinal derecho no

obsoleto, desarrollado como una lámina baja, ca-

si recta. Periostraco erizado de estrías concéntri-

cas lamelares, cubierto por series de papilas en

hileras radiales, entre las que se disponen otras

formaciones papilares minúsculas sin ordena-

miento. Interior de las valvas cubierto por macu-

laciones pardo rojizas densamente apiñadas.

Músculos retractores posteriores del pie muy de-

sarrollados funcionando como retractores del bi-

so, que es poderoso y fija al individuo en forma

permanente.

MATERIAL ESTUDIADO: HoLoriPo: Largo má-

ximo: 6.9 mm; altura máxima: 4.8 mm; espesor

máximo: 3.6 mm. Procedencia: río Uruguay, Co-

lón, Entre Rios. Depositado en la colección mala-

cológica del Departamento de Zoología

Invertebrados del Museo de Ciencias Naturales de

La Plata, N* 4998.

PARATIPOS: Museo de La Plata, Departamen-

to Zoología Invertebrados: Col. n* 5000, once

ejemplares procedentes del río Uruguay, Colón,

Entre Ríos. Tres ejemplares en la colección mala-

cológica de la sección Invertebrados del Museo

Argentino de Ciencias Naturales “Bernardino Ri-

vadavia”, lote N* 335109.

Otro material estudiado: 50 ejemplares de la

misma localidad, depositado en el Departamento

de Zoología Invertebrados, Museo de La Plata,

Col. 4999 y 5026.

DEscrIPCION: conchilla de contorno sub-tra-

pezoidal o triangular baja en ejemplares jóvenes,

equivalva, fuertemente inequilateral por el des-

plazamiento del umbo hacia la región anterior y

el incremento en las dimensiones del complejo

manto-conchilla posterior. La altura máxima de -

la conchilla se ubica decididamente en el cuarto

posterior. Paralelamente, la región anterior redu-

ce su desarrollo, al igual que el borde anterior

que es muy breve y curvo. El borde posterior in-

clinado y uniformemente curvo (Figs. 1 y 2) for-

ma un ángulo casi recto con el dorsal, levemente

curvado (Fig. 7). El borde inferior varía desde le-

vemente arqueado, hasta francamente recto.

Eupera guaraniana n. sp. (Pelecypoda: Sphaeriidae): ITuARTE, CRISTIAN F.

Fics. 1 y 2: Eupera guaraniana n. sp. (holotipo), Fic. 1: vista interna de valva derecha; FIG. 2: vista interna valva

izquierda; Fics. 3 y 4: Eupera guaraniana n. sp., Fic. 3: diente cardinal y lateral anterior izquierdos; FiG. 4: detalle

del diente cardinal izquierdo. (Escalas: Fics. 1 y 2 medidas del Holotipo en el texto; Fic. 3: 1000 um: FiG. 4: 100 um).

La relación largo/altura (l/a) queda expresa-

da en el lote estudiado por la ecuación:

a= -0,0408 + 0,7193 1

(Fig. 14) y la relación largo/espesor (1/e)

(Fig. 14):

e= -0,1215 + 0,4952 1

Umbos bajos, poco inflados, desplazados

anteriormente hasta una posición variable, rela-

cionada en forma inversa con el largo máximo de

la conchilla (Fig. 16). Se observa una tendencia

al desplazamiento anterior del umbo más marca-

da en los ejemplares de mayor talla. En el inter-

valo de tallas estudiado (4.8 a 7.2 mm de largo

máximo) el umbo tiende a ubicarse desde el 14%

hasta el 27% de la longitud máxima, según la re-

lación:

U= 37,485 + (-2,87) 1

donde U: posición del umbo (como porcentaje

del largo máximo) y 1: largo máximo. Es de des-

tacar que, aunque la tendencia es definida, la dis-

persión de los valores observados fue alta (coef.

correlación = 0,50; error estándar de la estima-

ción = 2,93).

Charnela con dientes bien desarrollados,

fuertes en todos los casos. El diente cardinal de-

recho, comúnmente reducido u obsoleto en otras

especies del género, presenta en E. guaraniana n.

sp. un desarrollo importante, a modo de lámina

baja, breve, casi recta, ubicado inmediatamente

bajo el umbo (Figs. 6 y 8). El diente cardinal iz-

quierdo es una lámina recta, chata y estrecha,

muy alta y de cúspide roma, implantada en forma

algo oblicua respecto al plano charnelar (Figs. 3

y 4).

Diente lateral anterior izquierdo triangular,

de cúspide central y base corta, casi confluente

con la del cardinal (Figs. 3 y 6). Lateral posterior

izquierdo de base alargada y recta, cúspide fran-

camente desplazada hacia el borde posterior

(Fig. 5). Dientes laterales anteriores derechos

Gayana Zool 58(1), 1994

Fros. 5-13: Eupera guaraniana n. sp.; Fic. 5: Diente lateral posterior izquierdo; Fic. 6: diente lateral anterior iz-

quierdo; FIG. 7: charnela completa de la valva derecha; Fic. 8: diente cardinal derecho; Fic. 9: dientes laterales ante-

riores derechos; FiG. 10: dientes laterales posteriores derechos; F1G. 11: papilas y pliegues periostracales; FiG. 12:

detalle de las hileras radiales de papilas mayores; Fic. 13: estructuras mameloniformes de la superficie interna de

los dientes laterales posteriores derechos. (Escalas: Fias. 5, 7, 9 y 10: 1000 um; Frs. 6, 8, 11 y 13: 100 um; Fr. 10):

10 um).

Eupera guaraniana n. sp. (Pelecypoda: Sphaeriidae): ITUARTE, CRISTIAN F.

muy robustos, especialmente el inferior, que se

desarrolla a modo de gruesa lámina escotada y

breve; el superior, sensiblemente menos desarro-

llado, casi se confunde con la pared de la conchilla

(Figs. 1, 7 y 9). Los dientes laterales posteriores

derechos igualmente bien desarrollados, especial-

mente el inferior, de cúspides desplazadas hacia

atrás (Figs. 1,7 y 10).

Tanto la superficie externa de los dientes la-

terales izquierdos anterior y posterior como la in-

terna de los laterales derechos anteriores y

posteriores, se presenta fuertemente esculturada

por rugosidades, que en la valva derecha se defi-

nen como mamelones romos bajos (Figs. 6, 9, 10

y iS)

Ligamento fuerte, ampliamente desarrollado

desde la base de los cardinales hasta algo más

allá del nacimiento de los laterales posteriores

(Figs. 5, 7 y 8). La relación largo máximo/longi-

tud del ligamento presenta valores entre 2,5 y

3,4. La figura 15 muestra la relación inversa exis-

tente entre los valores de la razón longitud del li-

gamento/largo máximo respecto del largo

máximo. Esto implica que para valores crecientes

largo (mm )

19 OO AO 59). 1169... 79

, Y ! Y 1) /

FIG. 14. Rectas de regresión de altura máxima y espe-

sor máximo sobre largo máximo.

de largo de la conchilla el ligamento es propor-

cionalmente más largo.

Periostraco color castaño oscuro, formando

amplios pliegues laminares altos. Toda la super-

ficie del periostraco está surcada por hileras ra-

diales de papilas triangulares, entre las que se

localizan otras papilas digitiformes muy bajas y

pequeñas dispuestas sin ordenamiento alguno

(Figs. 11 y 12).

Las hileras de papilas mayores, cuya base

mide aproximadamente 1.4 um y su altura alcan-

za a 2 um, se encuentran separadas por distancias

que varían entre 10 y 15 um (en mediciones to-

madas sobre la línea media de la altura valvar).

Glándula del biso presente y funcional en el

adulto, como es norma en el género. En E. gua-

raniana n. sp. el biso es una estructura de fija-

ción permanente, integrada comúnmente por un

grueso filamento que se adhiere al sustrato a tra-

vés de una base ensanchada. En algunos ejempla-

res se han observado dos o tres filamentos

acintados, chatos. Paralelo al gran desarrollo de

esta estructura de anclaje, los músculos retracto-

res posteriores del pie se encuentran muy desa-

rrollados y operan como retractores del biso. Su

impresión, muy marcada por encima de la corres-

pondiente al músculo aductor posterior es circu-

lar, cubriendo una superficie mayor al tercio de

la de aquél (Figs. 1 y 2).

El número de crías en incubación resultó

sensiblemente menor que el determinado para ta-

llas equivalentes en otras especies. En individuos

de entre 5,5 y 6,7 mm de largo máximo, se halla-

ron entre 8 y 16 crías (computándose ambas he-

mibranquias internas). La talla de embriones en

avanzado estado de desarrollo (shelled larvae),

próximas a ser expulsadas del individuo materno,

alcanza a 1,1 - 1,2 mm de longitud por 0,8-0,9 mm

de altura.

DISCUSION

Respecto de otras especies del género, E.

guaraniana n. sp. se diferencia por la siguiente

combinación de caracteres: contorno valvar sub-

trapezoidal (desde triangular baja en los indivi-

duos jóvenes hasta francamente trapezoidal en

algunos individuos de mayor talla): diente cardi-

nal izquierdo muy alto, de sección chata, cúspide

roma; diente cardinal derecho consicuo, desarro-

Gayana Zool 58(1), 1994

llado a modo de lámina baja, muy levemente ar-

queada; músculos retractores del pie muy desa-

rrollados, especialmente los posteriores que

funcionan como retractores bisales; umbo fuerte-

mente desplazado hacia la región anterior, que se

reduce respecto de la posterior, ampliamente ex-

pandida.

En E. guaraniana los retractores anteriores

del pie se encuentran igualmente más desarrolla-

dos que en especies del género en las que el biso

es un elemento de anclaje de carácter transitorio,

como E. platensis y E. klappenbachi.

El fuerte desarrollo del ligamento se corres-

ponde con una mayor necesidad de cohesión in-

tervalvar en una forma epifaunal, en la que el

proceso de elongación concomitante determina

un amplio desarrollo post-umbonal del borde

dorsal.

Comparte con E. elliptica Ituarte $ Dreher-

Mansur (ms) la peculiar ornamentación del pe-

riostraco con papilas de dos tamaños; el marcado

desplazamiento de los umbos y el desarrollo de

poderosos músculos retractores posteriores. Las

formaciones bisales de esta especie son tambien

poderosas, aportando a una fijación permanente y

Long. Lig./largo (mm)

largo (mm)

a un biotipo epifaunal adherido por el biso. Estas

características comunes a ambas especies se aso-

cian a la proximidad en ciertas condiciones am-

bientales de los hábitats que ocupan, ya que en

ambos casos se trata de cursos de agua de co-

rrientes rápidas, más poderosas aún en el caso de

E. elliptica. :

En lo que respecta al contorno valvar, E.

guaraniana n. sp. se aproxima al aspecto de Bys-

sanodonta paranensis d' Orbigny, 1846. En este

caso también, se trata de una especie que habita

fondos exclusivamente rocosos, en cursos de co-

rriente pronunciada (restringida al alto Paraná,

entre las localidades de Itatí y Paso de la Patria) y

que presenta un biotipo epifaunal adherente en

forma permanente por un biso poderoso.

Yonge (1962) y posteriormente Stanley

(1970) postulan que las relaciones morfométricas

de posición y de desarrollo relativo del complejo

manto/conchilla se modifican profundamente en

aquellas especies de bivalvos en las que evoluti-

vamente se adoptó un hábito de vida epifaunal fi-

jo por un biso poderoso cuyo desarrollo y

persistencia se origina en la necesidad de oponer

resistencia a ciertas condiciones ambientales co-

bo (% largo )

posicion um

72,

largo (mm)

Fics. 15 y 16. Relaciones morfométricas de E. guaraniana n. sp.; Fic. 15: regresión de los valores de la relación

longitud del ligamento/largo máximo, sobre largo máximo; Fi. 16: regresión de los valores de posición del umbo

(expresado como porcentaje del largo), sobre largo máximo.

Eupera guaraniana n. sp. (Pelecypoda: Sphaeriidae): IruARTE, CRISTIAN F.

mo fuerza de oleaje y/o corrientes de mareas. Es-

te proceso, que denominan gráficamente como de

“mitilización”” parece asimilable a lo que ocurre

dentro del género Eupera y que resulta en la con-

dición descripta para E. guaraniana n. sp. y E.

elliptica. En este sentido, Eupera platensis Doe-

llo-Jurado, 1921, representaría la condición origi-

nal para el género dentro de las cuencas de los

ríos Paraná, Uruguay y Río de La Plata. En esta

especie el contorno de la conchilla es oval algo

alargado, el umbo ocupa una posición casi cen-

tral, las valvas son casi equilaterales, el desarro-

llo de los aductores anteriores y posteriores es

similar, los retractores anteriores y posteriores

del pie son reducidos. Finalmente, el biso es una

estructura que si bien persiste en el adulto, brinda

una fijación transitoria o semipermanente en los

casos de formas que viven adheridas a raíces de

vegetación flotante u otros sustratos sumergidos.

También es común que E. platensis adopte un

biotipo infaunal en pequeños cursos de agua de

fondos fangosos o limosos; en este caso el biso

no es utilizado como estructura de fijación o bien

puede facilitar la adherencia transitoria a frag-

mentos sólidos incluidos en el sustrato.

Si en la evolución del género el desplaza-

miento del umbo y la reducción general de la

porción anterior del complejo manto-concha re-

sultan originados por la ocurrencia de una fija-

ción firme y permanente como respuesta a

condiciones ambientales, resulta congruente que

además durante el lapso de vida de cada indivi-

duo tal proceso se acentúe er aquéllos de -más

edad, como se observa en E. guaraniana n. sp. y

fuera también descrito para Byssanodonta para-

nensis d” Orbigny, 1846 (Ituarte, 1989). Esto se

manifiesta en los valores proporcionalmente ma-

yores de longitud del ligamento para valores cre-

cientes de largo valvar (Fig. 16), y en un

desplazamiento anterior del umbo más pronun-

ciado en las clases de talla mayores (Fig. 15).

AGRADECIMIENTOS

El autor agradece a la Lic. María de las Nie-

ves Rodríguez, por la cesión de parte del material

estudiado; al Dr. Mario E. Teruggi, la caracteri-

zación del sustrato rocoso sobre el que se colectó

el material de estudio; al Dr. Miguel Klappen-

bach, por facilitar el acceso al estudio de parati-

pos de E. doellojurado!.

BIBLIOGRAFIA

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Sphaeriidae) in the United States. American Mid-

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Gayana Zool. 58(1): 9-15, 1994

ISSN 0016-531X

SAMASTACUS ARAUCANIUS (FAXON, 1914): ASPECTOS MORFOLOGICOS

DE UN NUEVO REGISTRO PARA CHILE (CRUSTACEA:

DECAPODA: PARASTACIDAE)

SAMASTACUS ARAUCANIUS (FAXON, 1914): MORPHOLOGICAL

ASPECTS OF A NEW RECORD FOR CHILE (CRUSTACEA: DECAPODA:

PARASTACIDAE)

Rodrigo I. Martínez*, F. Esteban Llanos* y Aurora E. Quezada*

RESUMEN

Se establece el cuarto registro de Samastacus arauca-

nius (Faxon, 1914) para Chile, basado en dos machos

y seis hembras, provenientes de la localidad de Cosmi-

to (36” 46” S; 73 01” W) VIII Región-Chile. Se amplía

la distribución geográfica de la especie, por el Norte,

hasta dicha localidad y se describen algunos rasgos

morfológicos.

PALABRAS CLAVES: Samastacus araucanius, Parastaci-

dae, Morfología, Nuevo registro, Chile.

INTRODUCCION

Samastacus araucanius (Faxon, 1914) fue

descrito sobre la base de un ejemplar macho re-

colectado en Corral, en 1908. Faxon (1914) rela-

cionó esta especie con los camarones excavadores

Parastacus pugnax (Poeppig, 1835) (=P. hassle-

ri Faxon, 1898) y P. nicoleti (Philippi, 1882).

Riek (1971), basándose en el tipo de papila geni-

tal del macho, el plano de movimiento subhori-

zontal del dáctilo de las quelas y, supuestamente

por habitar en ríos y lagos, relacionó a Parasta-

“Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción. Casilla 2407, Concepción, Chile.

ABSTRACT

A fourth record of Samastacus araucanius (Faxon,

1914) for Chile, based on two males and six females

recollected in Cosmito (36* 46”S; 73 01"W) VII Re-

gion-Chile, is established. An extension to the north of

the previously known geographical range is reported.

Some morphological features of S. araucanius are des-

cribed.

KEYWORDs: Samastacus araucanius, Parastacidae,

Morphology, New record, Chile.

cus araucanius con P. spinifrons (= Samastacus

spinifrons Philippi, 1882) incluyendo ambas es-

pecies como Samastacus. Jara (1983), casi 70

años después de la descripción original, comuni-

có el hallazgo de un segundo ejemplar macho de

P. araucanius en Valdivia, donde coexiste con P.

nicoleti, destacó el parecido morfológico de la

especie con P. pugnax, pero enfatizó que la mor-

fología de la papila fálica lo relaciona más bien

con Samastacus. Buckup y Rossi (1986), en des-

conocimiento de la publicación de Jara (1983),

señalaron el hallazgo de un macho de Samasta-

cus araucanius en el Museo de Zoología de la

Universidad de Hamburgo, con lo cual confirma-

ron la existencia de la especie sin aportar mayo-

res antecedentes sobre su posición sistemática.

Rudolph y Rivas (1988) se refieren a un macho

de Samastacus araucanius recolectado en el sec-

tor de Hualqui y coinciden con Jara en la necesi-

dad de revisar la situación genérica de la especie.

Gayana Zool. 58(1), 1994

En el presente trabajo se registra el hallazgo

de ocho ejemplares adultos de Samastacus arau-

canius en una localidad cercana a Tomé, provin-

cia de Concepción, VIII Región, Chile. Además,

se realiza la descripción de algunos rasgos mor-

fológicos aportando datos que contribuyan al co-

nocimiento de ésta y, eventualmente, aclarar la

ubicación sistemática de Samastacus araucantus.

MATERIALES Y METODOS

Se examinaron 8 ejemplares adultos de Sa-

mastacus araucantus, dos machos, cinco hem-

bras ingrávidas y una ovífera, capturados

mediante una bomba extractora desde vegas del

sector Cosmito (36” 45”S; 73% 01*W) VIII Re-

gión, Chile, durante abril y noviembre de 1990.

En el laboratorio, el material se fijó en for-

maldehído al 5% y conservado en alcohol 70*.

Los ejemplares de S. araucanius fueron medidos

con un pie de metro de 0.1 mm de precisión. Se

registraron 16 dimensiones lineales referidas al

cefalotórax, quela mayor, quela menor, abdomen,

telson y papila genital masculina (Tabla 1). Me-

diante lupa estereoscópica IVB Carl Zeiss y Mi-

croscopio Electrónico de Barrido (SEM),

perteneciente al Laboratorio de Microscopía

Electrónica de la Universidad de Concepción, se

realizó la observación y análisis de la morfología

externa del caparazón y apéndices de los camaro-

nes. Las técnicas utilizadas para la obtención de

fotografías al SEM son las corrientemente utili-

zadas para tales efectos. Se consideraron, princi-

palmente, los atributos señalados por Hobbs

(1974) en la diagnosis de los géneros Parastacus

y Samastacus más dos caracteres seleccionados

por los autores en ejemplares adultos, machos y

hembras, de S. araucanius.

Los rasgos morfológicos considerados fue-

ron detalle de las siguientes estructuras:

- Cefalotórax*

- Abdomen*

- Tercer maxilípedo*

- Telson*

- Quelas*

- Base de los urópodos**

- Carpo de los quelípedos*

- Poros y papilas genitales”

- Surco cervical*

- Rostro**

* Rasgos morfológicos mencionados por

Hobbs (1974) en la diagnosis de Samastacus

y Parastacus.

** Rasgos morfológicos descritos por los autores.

La información morfológica se estableció

sobre la base de fotografías a color y blanco y ne-

gro, en las cuales se han indicado los caracteres

más relevantes mediante las abreviaturas que se

indican a continuación:

ABREVIATURAS USADAS EN EL TEXTO

BU : Base de los urópodos

Cq : Carpo de los quelípedos

CT : Cefalotórax

Da : Dáctilo

Df : Dedo fijo

Es : Espinas

Ex : Exopodito

Hm: Hendidura medial

Pf : Papilas fálicas

Pg : Poros genitales

Pr : Propodito

RO : Rostro

Se : Surco cervical

Sm : Surco medial

TE : Telson

Tm : Tercer maxilípedo

RESULTADOS

De las observaciones realizadas y de las me-

didas obtenidas de los ejemplares de S. arauca-

nius, se concluye que es una especie cuyos

adultos alcanzan pequeño tamaño (Tabla 1), con

una longitud promedio igual a 55,2 mm. Cefalo-

tórax (CT) corto, su longitud está contenida

aproximadamente 1,2 veces en la longitud del ab-

domen (Tabla 1); comprimido lateralmente; re-

gión anterior globosa; superficie dorsal lisa y

áreas laterales ligeramente punteadas (Fig. 1).

Tercer maxilípedo (Tm) punteado, con cer-

das en su cara ventral; el exopodito (Ex) se ex-

tiende hasta el extremo distal del meropodito

(Fig. 2).

Quelas asimétricas. Propodito (Pr) de la

quela mayor ancho y robusto, con los márgenes

Samastacus araucanius (Faxon, 1914): Aspectos morfológicos: MARTINEZ et al.

FlGs. 1-3. Samastacus araucanius (Faxon, 1914). Fic. 1. Vista dorsal del cefalotórax X 4: Fic. 2. Vista lateral del

tercer maxilípedo X 5; FiG. 3. Vista lateral de la quela mayor X 4.5.

Gayana Zool. 58(1), 1994

Fis. 4-9. Samastacus araucanius (Faxon, 1914). Fic. 4. Vista dorsal del rostro X 4; Fi. 5. Vista dorsal del carpo

del quelípedo X 20; F1G. 6. Surco cervical X 11; Fic. 7. Vista dorsal del telson X 10; Fic. 8. Vista dorsal de la pieza

basal de los urópodos X 18; Fic. 9. Vista general de los gonoporos femeninos.

Samastacus araucanius (Faxon, 1914): Aspectos morfológicos: MARTINEZ et al.

Fics. 10-11. Samastacus araucanius (Faxon, 1914). Fic. 10. Vista general de las papilas fálicas del macho X 11;

Fic. 11. Gonoporo masculino X 120.

dorsal y ventral lisos, superficies laterales granu-

losas; dedo fijo (Df) corto, grueso en su base, con

cerdas en las denticulaciones; dáctilo (Da) fuerte-

mente inclinado hacia abajo (Fig. 3). Propodito

de la quela menor delgado y alargado; dáctilo

dispuesto levemente horizontal al dedo fijo; ca-

racterísticas restantes similares a las de la quela

mayor.

Rostro (RO) corto y uniformemente puntea-

do; ligeramente curvo hacia abajo y no alcanza el

extremo distal del primer segmento antenular;

márgenes laterales poco pronunciados, subparale-

los originándose por delante del borde postorbital,

lo que da un aspecto subcuadricular al rostro, el

cual carece de espinas o prominencias postorbita-

les (Fig. 4).

Cara dorsal del carpo de los quelípedos (Cq)

tuberculado y, granulado en sus caras laterales;

presenta una pequeña hendidura media (Hm) en

su cara lateral externa (Fig. 5).

Surco cervical (Sc) largo, se extiende desde

el borde anterior del cefalotórax, por encima de

las maxilas y, se prolonga en forma sinuosa hasta

aproximadamente la región medio-dorsal del ce-

falotórax, donde forma una suave concavidad.

Presenta poca pilosidad y no es un surco profun-

do (Fig. 6).

Abdomen liso y largo; longitud promedio

igual a 26.3 mm (Tabla 1). Pleuras redondeadas;

primer pleurón presenta una hendidura originada

en los bordes laterales y que se proyecta tenue-

mente en la porción dorsal del abdomen. Telson

(TE) rectangular, más largo que ancho (Fig. 7);

con un surco medial (Sm) en su cara dorsal; pre-

senta dos espinas (Es) pequeñas en los márgenes

láteroposteriores; caras laterales con pilosidad

que aumentan de tamaño y cantidad a medida

que se acercan al extremo posterior de las caras

laterales.

Base de los urópodos (BU) desprovista de

granulaciones y tubérculos (Fig. 8); con una subdi-

visión transversal originando dos subunidades que

se articulan, en forma separada, a cada urópodo.

S. araucanius es de sexo separado. La hem-

bra presenta gonoporos (Pg) circulares, rodeados

parcialmente por pilosidad, cubiertos por una

membrana tenue y ligeramente convexa, situados

en la coxa del tercer par de pereiópodos (Fig. 9).

Macho con una papila fálica (Pf) elongada y cal-

cificada, ubicada en la coxa del quinto par de pe-

reiópodos (Fig. 10), en cuyo extremo apical está

el gonoporo (Pg) masculino (Fig. 11).

Finalmente, es conveniente destacar que los

ocho ejemplares de S. araucanius fueron encon-

Gayana Zool. 58(1), 1994

trados en galerías y compartiendo el hábitat con

P. pugnax, en terrenos de vega del sector Cosmi-

to. La vegetación predominante del sector está

representada por Hypochaeris radicata, Rumex

sp. y Gramíneas.

- DISCUSION Y CONCLUSION

Las observaciones realizadas, hasta la fecha,

sobre S. araucanius se han basado en un solo

ejemplar macho, lo que ha provocado disparidad

de opiniones acerca de la posición genérica de

dicha especie (Riek, 1971; Jara, 1983). Por otra

parte, las características particulares de este

camarón han contribuido, en gran medida, a

aumentar las discrepancias existentes. Las carac-

terísticas morfológicas del cefalotórax, del tercer

maxilípedo, de las quelas, del surco cervical, del

abdomen y de los gonoporos femeninos y mas-

culinos de S. araucanius lo relacionan con el

género Samastacus; en cambio los rasgos de la

porción posterior del rostro y de la pieza basal de

los urópodos, más el hecho de habitar en galerías,

lo relaciona a Parastacus Huxley (Ver dibujos y

diagnosis de Hobbs, 1974). S. araucanius presen-

ta, además, rasgos propios como las característi-

cas de la porción anterior del rostro, del carpo de

los quelípodos y del telson, que no se ajustan a lo

señalado para los dos géneros citados anterior-

mente.

Como la posición sistemática de S. arauca-

nius no está aún claramente definida, es necesa-

rio realizar estudios tendientes a determinar si las

semejanzas que presenta con los géneros Paras-

tacus y Samastacus corresponden a caracteres

homólogos u homoplásicos y si los caracteres

propios de esta especie corresponden a autopo-

morfías que podrían justificar la proposición de

un nuevo género para esta especie (Jara, 1991

com. pers.). Este trabajo entrega rasgos morfoló-

gicos, no considerados anteriormente, que permiten

caracterizar a S. araucanius y que, eventualmente,

sean utilizados como base para futuros estudios

tendientes a resolver el problema de su posición

sistemática, como también las relaciones filoge-

néticas entre las cuatro especies de Parastacidae

descritos para Chile.

El hecho de haber recolectado los ejempla-

res en terrenos de vega donde construyen galerías

y coexiste con P. pugnax, unido a los anteceden-

tes entregados por Jara (1983) y Rudolph y Rivas

(1988) permite afirmar que S. araucanius es una

especie excavadora.

Finalmente se amplía la distribución geográ-

fica de $. araucanius, hacia el Norte, hasta la lo-

calidad de Cosmito (36* 46” S; 73% 01” W) VIH

Región- Chile.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen al personal técnico

del Laboratorio de Microscopía Electrónica de la

Universidad de Concepción por su colaboración

en la obtención de las fotografías al SEM; al Sr.

Rubén Sepúlveda, por las copias fotográficas y al

profesor Carlos Jara, de la Universidad Austral

de Chile, por las orientaciones dadas para el de-

sarrollo del trabajo.

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Región - Chile.

SEXO M M H H H H las, MER X

LONGITUD TOTAL IL SA SOS AS IO A AO OO

CEFALOTORAX

Longitud INDIOS LO SIS SO zo 2D

Ancho TIRADO SS ALOHA ESA OA MANOS

Alto IDAS TOS SEO IZABAL AE

QUELA MAYOR

Longitud IO 19:45 11.020 SSA 520 ZAPATISTA OIE

Ancho QUO. ISI ESO iZ o

Alto NEO 2 O OS O ZO SA

Longitud del dáctilo 100111220 9 O 0 OT ZO) SIS

QUELA MENOR

Longitud IOGAIME6 - Sl MAIN - 10.1

Ancho 2180 29 - e RS Di - 2.6

Alto 48 4,59 - IA - 4.4

Longitud del dáctilo OTAOES - IMA ONE - 6.2

ABDOMEN

Longitud ZO PELI 23.2. 2.01 HENO MESS ESOUEADA

Ancho 0 RS O SOSA SAO OS PISOS OS

LONGITUD DEL TELSON UR A DI O pd a LM TA DOTES

LONGITUD PAPILA

FALICA DEL MACHO US - - - - - - 34

M = Macho adulto

H = Hembra adulto

H* = Hembra ovígera

ms OS ZE ae

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Gayana Zool. 58(1): 17-25, 1994

ISSN 0016-531X

PRESENCIA DE CHELETOMORPHA LEPIDOPTERORUM (SHAW, 1794)

EN ACTINIDIA CHINENSIS PLANCH “KIWI” EN CHILE Y

REDESCRIPCION DEL MACHO (ACARI: CHEYLETIDAE)

PRESENCE OF CHELETOMORPHA LEPIDOPTERORUM (SHAW, 1794) IN

ACTINIDIA CHINENSIS PLANCH “KIWI” FROM CHILE AND

REDESCRIPTION OF THE MALE (ACARI: CHEYLETIDAE)

A.A. Peredo*, R.I. Martínez*, P.M. Aqueveque** y M.E. Casanueva*

RESUMEN

Se señala la presencia de Cheletomorpha lepidoptero-

rum (Shaw, 1794) en hojas de Actinidia chinensis

Planch “kiwi” en Chile. Se entrega la redescripción del

macho, apoyada por esquemas originales y fotografías

y, se discuten variaciones morfológicas intraespecífi-

cas.

PALABRAS CLAVES: Acari, Cheyletidae, Cheletomorpha

lepidopterorum , kiwi, Chile.

INTRODUCCION

En Chile, la familia Cheyletidae se encuen-

tra representada por tres especies, Eucheyletia

hardyi Baker, 1949, Cheyletus eruditus (Schrank,

1781) y Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw,

1794), las cuales fueron registradas en polvo de

habitación (Artigas y Casanueva, 1983). Sin em-

bargo, otros autores indican que las especies de

esta familia habitan en una gran diversidad de

ambientes, así es posible encontrarlas también en

productos almacenados (Prado, 1991), asociadas

* Departamento de Zoología, Universidad de

Concepción, Casilla 2407, Concepción-Chile.

** Departamento de Botánica, Universidad de

Concepción, Casilla 2407, Concepción-Chile.

ABSTRACT

The presence of Cheletomorpha lepidopterorum

(Shaw, 1794) on leaves of Actinidia chinensis Planch

“kiwi” from Chile is informed. A redescription of the

adult-male with the aid of original drawings and pho-

tographs is given. Some intraspecific morphological

variations are discussed.

KeYworDs: Acari, Cheyletidae, Cheletomorpha lepi-

dopterorum, kiwi, Chile.

a aves y mamíferos, de vida libre en habitáculos

de animales y árboles frutales, siendo estas últi-

mas principalmente especies depredadoras de

ácaros fitófagos (Summers y Price, 1970), en alas

de polilla, nidos de gorrión y corteza de pino en

USA (Hughes, 1973).

La información bibliográfica sobre Cheleto-

morpha lepidopterorum (Shaw, 1794) en Chile

es escasa. Artigas y Casanueva (1983) lo regis-

tran por primera vez en localidades de la VIII y

X Regiones, junto con Cheyletus eruditus (Sch-

rank, 1781), Glycyphagus destructor (Schrank,

1781) y Tyrophagus putrescentiae (Schrank,

1781), donde constituye el 20% de la población

de ácaros del polvo de habitación (Casanueva y

Artigas, 1985).

En el presente trabajo se informa el hallazgo

de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794)

en follaje de “kiwi”, Actinidia chinensis Planch,

provenientes de la VII Región, Chile. Se incluye

una redescripción del macho, apoyada con esque-

Gayana Zool. 58(1), 1994

mas y fotografías, destacando las variaciones

morfológicas intraespecíficas.

MATERIALES Y METODOS

Un total de 50 muestras de hojas de Actini-

dia chinensis Planch (n.v. kiwi) fueron recolecta-

das durante los meses de septiembre-octubre de

1992 en la localidad de Molina (35* 07” S; 71%

17” W) VII Región, Chile. En el laboratorio las

hojas fueron examinadas bajo lupa estereoscópi-

ca y los especímenes fueron separados y fijados

en alcohol 70%. El aclarado y montaje se realizó

con solución Nesbitt y Berlese respectivamente.

Se entrega una breve diagnosis de reconoci-

miento del macho de Cheletomorpha lepidopte-

rorum (Shaw) apoyada con esquemas originales.

Las fotografías fueron obtenidas en un fotomi-

croscopio Olimpus CH-2, con aumentos de 4x a

10x.

La identificación de los individuos se reali-

zÓ mediante el uso de la clave pictórica de Arti-

gas y Casanueva (1983) y se compararon con los

especímenes depositados en el Museo de Zoolo-

gía de la Universidad de Concepción (MZUC).

Se mantiene el patrón de presentación de la des-

cripción de la especie y las abreviaturas utiliza-

das por Artigas y Casanueva (1983).

ABREVIATURAS USADAS EN EL TEXTO

a : seta anal

AA : abertura anal

AG : abertura genital

E : Ojos propodosomales

g : seta genital

B : peritrema

pa : seta postanal

PH : placa histerosomal

PP: placa propodosomal

Pr :protegmen

Pt : protuberancia media de la uña tibial del

pedipalpo

PT: pretarso

Ro: rostro.

S : seta ventral del idiosoma

SS : seta anexa o soporte

sc : seta escapular

scx : seta coxal

sdm : seta propodosomal medial

sp : seta patelar

SP : seta pectinada del tarso del pedipalpo

st : seta tibial

T : tegmen

Tb : tibia

tc : seta addorsal del tarso

TC : uña tibial del pedipalpo

u : uña

w : solenidio omega

RESULTADOS

En las hojas de “kiw1” analizadas se registró

la presencia de 12 individuos machos adultos C.

lepidopterorum.

Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794)

Acarus lepidopterorum Shaw, 1794.

Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw). Oude-

mans, 1937; Summers y Price, 1970; Hughes,

1973; Artigas y Casanueva, 1983; Casanueva y

Artigas, 1985.

Cheyletus venustissima Koch, 1839.

Cheletomorpha venustissima (Koch). Oudemans,

1904; Rohdendorf, 1940; Eyndhoven, 1964.

Cheyletus longipes Megnin, 1878.

Cheyletus seminivorus Packard, 1878.

Cheyletus rufus Hardy, 1933.

Cheletophyes tatami Hara, 1955.

Cheletophyes knowltoni Beer y Dailey, 1956.

Macho (Figs. 1 y 2):

Idiosoma amarillo-marrón, ovalado; cubier-

to por dos placas dorsales finamente puncturadas.

Placa propodosomal (PP) mayor que la histeroso-

mal (PH); con cuatro pares de setas largas y pec-

tinadas, tres de las cuales están insertadas en el

margen anterolateral y una en el tercio posterola-

teral y, con dos setas cortas y lisas (sdml1 y sdm2)

a cada lado del eje medial. Ojos ovalados, con

rugosidad basal, de posición lateral, ubicados en-

tre las setas propodosomales dos y tres. Placa

histerosomal con cinco pares de setas largas y

pectinadas en el margen lateral, además de tres

setas cortas y lisas, dos de las cuales (sdm3 y

sdm4) se ubican en el tercio anterior y una

(sdm5) en el posterior, alineadas con las setas

propodosomales mediales. El idiosoma porta,

además, una seta posterior (pa) y una seta esca-

Presencia de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794) en Actinidia chinensis: PEREDO et al.

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FiG. 1. Vista dorsal del macho de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw).

Gayana Zool. 58(1), 1994

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FIG. 2. Vista ventral del macho de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw).

Presencia de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794) en Actinidia chinensis: PEREDO ef al.

pular (sc) lateral ubicada entre las patas II y HI

(Fig. 1).

En vista ventral (Fig. 2) el idiosoma porta

tres pares de setas cortas y lisas (SI- SII), alinea-

das a lo largo de la línea medio-ventral; SII y SII

más próximas entre sí que SI y SII. Protegmen

(Pr) se extiende hacia adelante cubriendo la ma-

yor parte del rostro (Ro), el cual es triangular y

alargado, sobrepasando la base de la uña del pe-

dipalpo y porta tres pares de setas, un par dorsal,

un par ventral y un par de setas cortas en la re-

gión de la boca. Tegmen (T) más ancho en la ba-

se que en el ápice. Peritrema (P) corto y arqueado,

con divisiones poco notorias, que casi se unen en

la línea media del extremo anterior del tegmen.

Pedipalpo muy desarrollado (Figs. 1 y 2);

las coxas ocupan el área anterior del idiosoma y

portan un par de setas anteriores lisas; fémur an-

cho, con el borde externo subgloboso, con tres

setas dorsales pectinadas y dos setas ventrales li-

sas; tibia con dos setas basales lisas; uña tibial

(TC) larga, con el borde interno liso y una protu-

berancia media dentiforme; ápice del tarso con dos

setas pectinadas más largas que la uña tibial y dos

setas lisas, externa más larga que la seta interna.

Primer par de patas largas (Figs. 1 y 2), de

longitud igual al doble del ancho mayor del idio-

soma; seta segmentada apical del pretarso I cua-

tro veces más larga que el pretarso; seta addorsal

(tc) aproximadamente igual al doble de la longi-

tud del tarso. Apodemas de las patas III y IV se-

parados; patas I y IV con dos setas coxales (scx);

patas II y [II con una sola seta. Pata IV un tercio

más larga que la II o III, tibia IV con cuatro setas

largas, una lisa y tres pectinadas que sobrepasan la

mitad del tarso.

Abertura genital (AG) dorsal (Fig. 1), alar-

gada, alcanzando el extremo posterior del idioso-

ma, y con un solo par de setas genitales (g).

Abertura anal (AA) ovalada (Fig. 2), no alcanza

el extremo posterior del idiosoma, y con cinco

pares de setas anales (a): al y a2 juntas en una

subplaca pequeña, ovalada y de ubicación ante-

rior en la placa anal, a3 y a4 de ubicación medio-

lateral y distantes de a5.

DISTRIBUCION

Cosmopolita. En Chile se registra en Dicha-

to, Talcahuano, Concepción, Valdivia (Casanue-

va y Artigas, 1985) y en Molina.

DISCUSION

Los especímenes machos de C. lepidoptero-

rum encontrados en hojas de “kiwi” Actinidia

chinensis presentan diferencias morfológicas con

aquéllos descritos por Artigas y Casanueva

(1983) de polvo de habitación (Figs. 3 y 4). Entre

las variaciones intraespecíficas observadas se

destacan las siguientes:

Cara interna de la uña tibial (TC) del pedipalpo

con sólo una protuberancia media (Pt) (Fig. 5).

Apice del tarso palpal con cuatro setas: dos

uniformemente pectinadas (SP) y dos lisas, no re-

curvadas en el ápice (Fig. 6).

Seta lisa interna del tarso palpal más larga

que la seta externa y setas pectinadas (Fig. 6).

Rostro aguzado y largo, su longitud sobre-

pasa la base de la uña palpal.

Pata IV con la tibia (T), setas tibiales (st) y

setas patelares (sp) más largas (Fig. 7).

Ojos propodosomales (E) evidentes, ubica-

dos en el área comprendida entre las patas Il y HI

(Fig. 8).

Setas propodosomales mediales (sdm) lisas

y más largas (Fig. 9).

Abertura genital (AG) ancha, con sólo un

par de setas genitales (Fig. 10).

Placa anal ovalada, con cinco pares de setas

(a). Setas anales uno y dos (al y a2) insertas en

un pequeño esclerito de posición anterior. Seta

anal cinco (a5) ubicada en el extremo posterior

de la placa anal (Fig. 11).

CONCLUSIONES

El análisis de las muestras de hojas de Acti-

nidia chinensis Planck “kiwi” provenientes de la

VII Región, Chile, permitió establecer la presen-

cia de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw),

como primer registro para este hospedador.

Existen diferencias morfológicas entre los

ejemplares registrados en el polvo de habitación

por Artigas y Casanueva (1983) y los analizados

en este estudio. Sin embargo, dichas variaciones

morfológicas no constituyen atributos suficientes

para una diferenciación a nivel específico, sino

que más bien se trata de variables intraespecífi-

cas que probablemente respondan a las diferen-

cias de sustrato, localidad, estación del año, etc.

Gayana Zool. 58(1), 1994

Es importante destacar la presencia de Che-

letomorpha lepidopterorum en hojas de “kiwi”,

debido a que es una especie depredadora de otros

artrópodos. Futuros estudios de esta especie po-

drán comprobar su potencial utilidad como con-

trol biológico de otros ácaros fitófagos.

AGRADECIMIENTOS

El presente trabajo se desarrolló con la cola-

boración del Proyecto 92.38.25-1 de la Dirección

de Investigación de la Universidad de Concep-

ción:

Los autores agradecen al Ing. Agr. Renato

Arce, del S.A.G. de Concepción, por facilitar el

uso del fotomicroscopio.

BIBLIOGRAFIA

ARTIGAS, J.N. y CASANUEVA, M.E. 1983. Acaros del

polvo de las habitaciones en Chile (Acari). Gaya-

na Zoología, 47:106 pp. E

CASANUEVA, M.E. y ARTIGAS, J.N. 1985. Distribución

geográfica y estacional de los ácaros del polvo de

habitación en Chile (Arthropoda: Acari). Gayana

Zoología, 49:3-76.

HuGHEs, A.M. 1973. The mites of stored food and hou-

ses. Ministry of Agriculture, Fisheries and Food.

Technical Bulletin, 9: 400 pp.

Prapo, E. 1991. Artrópodos y sus enemigos naturales

asociados a plantas cultivadas en Chile. Instituto

de investigaciones Agropecuarias INIA serie Bo-

letín Técnico, 169:94-101.

SUMMERS, F.M. and Price, D.W. 1970. Review of the

mite family Cheyletidae. University of California

publications in Entomology, 61:1-121.

Presencia de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794) en Actinidia chinensis: PEREDO et al.

Fic. 3. Vista dorsal del macho de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) descrito por Artigas y Casanueva (1983).

Fic. 4. Vista ventral de la hembra de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) descrito por Artigas y Casanueva

(1983).

Gayana Zool. 58(1), 1994

FIG. 5. Vista lateral de la uña tibial del pedipalpo de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) macho adulto.

FiG. 6. Vista lateral de las setas pectinadas del tarso del pedipalpo x40 de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw)

macho adulto.

FiG. 7. Pata IV x10 de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) macho adulto.

Presencia de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw, 1794) en Actinidia chinensis: PEREDO et al.

FG. 8. Ojo propodosomal x40 de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) macho adulto.

FiG. 9. Setas propodosomales mediales x10 de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) macho adulto.

FiG. 10. Seta genital x40 de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) macho adulto.

FiG. 11. Placa anal x40 de Cheletomorpha lepidopterorum (Shaw) macho adulto.

Gayana Zool. 58(1): 27-60, 1994

ISSN 0016-531X

SISTEMATICA Y FILOGENIA DE LAS ESPECIES DEL GENERO SCANIA

N.GEN. (PSEUDOLEUCANIA IN PART) (LEPIDOPTERA: NOCTUIDAE)

DE LA SUBREGION ANDINO-PATAGONICA

SYSTEMATIC AND PHYLOGENY OF THE SPECIES OF GENUS SCANIA

N.GEN. (PSEUDOLEUCANIA IN PART ( LEPIDOPTERA: NOCTUIDAE)

OF THE ANDINEAN- PATAGONIAN SUBREGION

Tania S. Olivares*

RESUMEN

Se revisan las especies colocadas previamente en el

“srupo messium” Angulo y Olivares (1992) del género

Pseudoleucania Staudinger. Dichas especies son rede-

finidas y colocadas sobre la base de la genitalia del

macho, hembra y epífisis podial e incluídas en Scania

n.gen. Las siguientes nuevas especies y nuevas combi-

naciones son propuestas: Scania anelluspinata n. sp.,

Scania aspersa (Butler) n. comb., S. messia (Guenée)

n. comb., $. neuquensis (Koehler) n. comb., S. odonto-

clasper n. sp., S. perlucida (Koehler) n. comb., S. pe-

rornata (Koehler) n. comb., $. simillima (Koehler) n.

comb., S. strigigrapha (Hampson) n. comb., y S. teph-

ra (Koehler) n. comb. Las especies están distribuidas

en la subregión Andino-Patagónica. El análisis filoge-

nético demuestra que es un género monofilético, y

además, hermano de Pseudoleucania Staudinger. Se

entrega una clave para la identificación de las especies

basada en las genitalias de machos y hembras y de la

maculación alar y epífisis podial.

PALABRAS CLAVES: Lepidoptera. Noctuidae. Scania n.

gen. Subregión Andino-Patagónica. Sistemática. Filo-

genia.

“Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción. Casilla 2407, Concepción, Chile.

ABSTRACT

The Andinean-Patagonian species previously ubicated

in messium group (Angulo y Olivares, 1992) of the ge-

nus Pseudoleucania Staudinger are revised. These spe-

cies are redefined and on the base of male and female

genitalia, wing maculation and podial epiphisis are in-

cluded in Scania n. gen.

The following new species and combinations are pro-

posed. Scania anelluspinata n. sp, Scania aspersa (Bu-

tler) n. comb., Scania messia (Guenée) n. comb..

Scania neuquensis (Koehler) n. comb., S. odonto-

clasper n sp., Scania perlucida (Koehler) n. comb.,

Scania perornata (Koehler) n. comb., Scania simillima

(Koehler) n. comb., Scania strigigrapha ( Hampson) n.

comb. y Scania tephra (Koehler) n. comb. The studied

species are distributed in the Andinean-Patagonian

Subregion. The phylogenetic analysis shows that Sca-

nia n. gen. is monophyletic and the sister-group of

Pseudoleucania Staudinger. Identification key for the

species based in the male and female genitalia, wing

maculation and podial epiphisis is given.

KeyworDs: Lepidoptera. Noctuidae. Scania nov.gen.

Andinean-Patagonian Subregion. Systematic. Phylo-

geny.

INTRODUCCION

En la subregión Andino-Patagónica se en-

cuentran una serie de géneros de Noctuidae que

se caracterizan por poseer una espina de base

bulbosa en el cornuti del aedeagus entre los cua-

les están Euxoamorpha Franclemont, Paraeuxoa

Gayana Zool. 58(1), 1994

Forbes, Tisagronia Koehler, Pseudoleucania

Staudinger y otros (Angulo y Olivares, 1989).

El género Pseudoleucania fue descrito en

1899 (basado en una hembra del Este de Tierra

del Fuego), cuya especie tipo es Pseudoleucania

ignicola Staudinger. Dicho género fue creado pa-

ra incluir especies meridionales del continente

sudamericano, especialmente de la subregión An-

dino-Patagónica. Las especies correspondientes a

América del Norte quedaron incluidas en el gé-

nero Lycophotia Huebner. Existe una cantidad

considerable de especies nominales adjudicadas

al género Pseudoleucania Staudinger.

A partir de una lista de 62 especies nomina-

les de Pseudoleucania Staudinger, Angulo y Oli-

vares (1992) confeccionan un catálogo y

proponen, sobre la base de la genitalia (por ser

dificultoso hacerlo por maculación alar), grupos

de especies, quedando el género Pseudoleucania

formado por cuatro grupos de especies: grupo

antarctica, grupo ignicola, grupo infecta y grupo

messium. Dos de ellos: grupo antarctica forma el

género Janaesia Angulo (1993) y el grupo infec-

ta forma la base de dos nuevos géneros Eltafia y

Missio Angulo (1993).

La información respecto a la bionomía de

las especies componentes del grupo messium es

escasa. Entre los trabajos que dan inicio al cono-

cimiento de estas cuncunillas están el de Angulo

y Weigert (1975) quienes describen la ovipostura

de P. ferruginescens ( Blanchard) (sensu Angulo

y Weigert) indicando que: “...ovipone en masas

de aproximadamente 70 a 75 huevos en hileras

ordenadas de 7 o menos huevos”; Biezanko et al.

(1959) hace referencias a la larva de Peridroma

(Anicla) messium indicando que: “la oruga vive

sobre gramíneas silvestres y cultivadas”.

Angulo (1978) propone una clasificación de

noctuidae de acuerdo al tipo de pupación de sus

cuncunillas, así indica que P. ferruginescens po-

see larvas y pupas hipógeas y, las pupas presen-

tan espiráculos ubicados a ras del tegumento,

extremo anterior pupal romo y mitad posterior

del abdomen escasamente móvil al estímulo tác-

til; ésta última característica es recalcada por An-

gulo (1991).

Cuando la larva se alimenta de plantas de

cultivo agrícola: Artigas (1993) menciona para

Pseudoleucania aspersa (Butler): cereales, alfal-

fa, hortalizas, plantas de chacarería, empastadas

y para Pseudoleucania ferruginescens (Blan-

chard): hortalizas, plantas de chacarería, empas-

tadas; Prado (1991) menciona como hospedero

de ballica y trébol rosado. Biezanko et al. (1959)

menciona para Peridroma (Anicla) messium

(Guenée) que la “oruga vive sobre gramíneas sil-

vestres y cultivadas”.

Actualmente la distribución geográfica co-

nocida de las especies que conforman el grupo

messium, corresponde a Argentina: Koehler

(1945, 1963); Bolivia: Koehler (1958, 1961);

Uruguay : Biezanko et al. ( 1959); Perú: Koehler

(1961) y algunas localidades en Chile: Gay,

(1852), Butler fide Bartlet-Calvert (1885), Hamp-

son (1903, 1905), Forbes (1934), Koehler (1945),

Angulo y Weigert (1975), Parra et al. (1986),

Angulo y Olivares (1992) y Artigas (1993).

MATERIALES Y METODOS

Se examinaron 621 ejemplares pertenecien-

tes a especies adscritas al género Pseudoleucania

Staudinger y, mediante el estudio de genitalia del

macho, se separaron las especies pertenecientes

al grupo messium. Los ejemplares utilizados pro-

vienen de los siguientes museos y colecciones

privadas: Museo de Zoología de la Universidad

de Concepción (MZUC), Fundación e Instituto

Miguel Lillo. Argentina (IML), Museo Británico

(Natural History). Inglaterra (BMNH), Sr. Luis

Peña. Chile ( LP), Sr. Eduardo Godoy. Chile

(EG), Colección Rodríguez. Chile (CR) y Colec-

ción Krammer. Chile (CK).

Las recolecciones de terreno se realizaron

en los meses de octubre a febrero de 1992 en Pe-

dro de Valdivia, Vegas de Nonguén, San Pedro

de Concepción y el Fundo Jauja (Prov. Cautín),

en enero y febrero de 1992, mediante una trampa

fototrópica de 115 Watts.

Para ilustrar la ubicación geográfica de las di-

ferentes especies, se utilizó un mapa de Sudaméri-

ca con escala de 1: 51.000.000 para cada especie.

A) Tratamiento taxonómico:

Se entrega la descripción original de cada

especie y se agregan las descripciones de las es-

tructuras faltantes apoyadas con fotografías obte-

nidas al Microscopio Electrónico de Barrido. En

la descripción y redescripción de las especies se

utilizó los caracteres de la genitalias del macho y

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n.gen.: OLIVARES T. S.

de la hembra, epífisis, podial, sensilas antenales y

maculación alar.

Para la obtención de las estructuras que se

analizaron al microscopio electrónico se utilizó

los siguientes procedimientos:

a) Extracción del órgano timpánico: según

Olivares (1992).

b) Extracción de las antenas: se retira la

cabeza del ejemplar y se adosa a la platina.

c) Extracción de la epífisis: se retira el pri-

mer par de patas y se coloca por un par de minutos

en Hipoclorito de Sodio para el ablandamiento y

posterior descamado, luego se coloca en ácido

acético para neutralizar el efecto del hipoclorito,

se traspasa a alcohol 70 % w/v para el lavado y,

finalmente, a xilol para eliminar alguna película

de grasa restante. Posteriormente se pega la tibia

con esmalte de uñas a la platina para el consi-

guiente tratamiento de microscopía electrónica.

El tratamiento, de las muestras así obtenidas, pa-

ra el estudio al microscopio electrónico fue el si-

guiente:

Secado a punto crítico en un horno a 40*C.

Metalización con Au (en atmósfera de Ar)

por tres minutos con una corriente de 20 mA en

un Sputter Coater (Edwards), (la inclinación de la

muestra fue de 45").

Las escalas usadas en todas las figuras es-

quemáticas corresponden a 1 mm

Para la búsqueda y confirmación de un

nombre genérico nuevo se consultó Neave (1940)

y Nye (1975, 1980).

B) Tratamiento filogenético:

Una vez fotografiadas las ultraestructuras y

examinados los caracteres morfológicos, se pro-

cedió a la búsqueda de caracteres y a su polariza-

ción mediante el método del grupo externo

(out-group).

Todos los datos obtenidos en este estudio

fueron analizados por el programa computacional

Mc Clade version 2.1. En la matriz de datos, para

los caracteres que son dudosos, no están presen-

tes, o no pueden ser vistos se utiliza el símbolo ?.

ABREVIATURAS USADAS

aed : aedeagus

aan : apófisis anteriores

amp :ampulla

ap : ápice

a.po : apófisis posteriores

cebu :cervix bursae

el : clásper

co : cornuti

cobu : corpus bursae

coep : corpus epifisiario

collm : collum o cuello epifisiario

cor : Corona

dig : digitus

dus : ductus seminalis

es : espinas

esp : espolones

fae : funda del aedeagus

fle : floccus epifisiario

IML : Instituto Miguel Lillo. Tucumán.

lIbe : labellum o labio epifisiario

lov : lóbulos del ovipositor

MZUC : Museo de Zoología Universidad de

Concepción

osbu :ostium bursae

sa : SACCus

sac : sacculus

sig : SIgnum

so : soquete epifisiario

te : tegumen

un : UNCUS

ve : vesica

yx : yuxta

RESULTADOS

Tras una revisión taxonómica de las espe-

cies nominales del “grupo messium” del género

Pseudoleucania Staudinger, Angulo y Olivares

(1992): aspersa Butler, bridarolliana Koehler,

ferruginescens Blanchard, messium Guenée, stri-

glgrapha Hampson, tephra Koehler y witímeri

Koehler, en conjunto con la revisión del catálogo

del mismo género, se propone que algunas de las

especies correspondientes al grupo messium for-

men un nuevo género denominado Scania nov.

gen., próximo a Pseudoleucania Staudinger y

que esté formado definitivamente por 10 espe-

cies, dos de las cuales son nuevas para la ciencia:

S. anelluspinata nm. sp., S. aspersa ( Butler) n.

Gayana Zool. 58(1), 1994

comb. S. messia ( Guenée) n. comb., S. neuquen-

sis (Koehler) n. comb., S.odontoclasper n.sp., $.

perlucida ( Koehler) n. comb., S. perornata (

Koehler) n. comb., S. simillima (Koehler) n.

comb., S. strigigrapha (Hampson) n. comb., S.

tephra (Koehler) n. comb.

Pseudoleucania Staudinger ( s.stricto)

Especie tipo: Pseudoleucania ignicola Stau-

dinger, 1899.

“37 mm de color gris ceniza, salpicado de

un tono algo oscuro, alas anteriores largas y an-

gostas con líneas longitudinales difusas y más os-

curas; de éstas 1-2 llegan hasta detrás de la celda

mediana más nítidamente y son de un tono ne-

gruzco; alas posteriores blancas, con un borde

anterior enpolvado de gris, puntos oscuros del

limbo en la mitad superior del borde exterior”.

(Trad. Staudinger, 1899).

DIAGNOSIS: antenas biserradas a bipectina-

das, 3.5 a 4.0 mm de envergadura alar, ojos gla-

bros, palpos recurvados, fémur con abundante

pilosidad, tarso con hileras de espinas.

Alas anteriores de color castaño-rojizo con

las manchas reniformes, orbicular, fuertemente

marcadas, las bandas subterminal, terminal y ter-

minal bien definidas.

Alas posteriores blancas con los bordes con

escamas oscuras.

GENITALIA: clásper alargado, doblado dorso-

ventralmente, digitus ausente; uncus de ancho

uniforme terminando en cuatro púas, valva con

un “cuello hadenino” muy pronunciado; corona

bien definida; yuxta subcuadrangular, saccus re-

dondeado; aedeagus con espinas simples.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA: Sud américa meri-

dional: Argentina (Catamarca, La Paz, Córdoba,

Comodoro Rivadavia, Cipolletti, Río Negro, San

Martín de los Andes, Pucará, Junín de los Andes,

Neuquén, Nahuel Huapi), Bolivia (Koehler,

1945) Brasil, Chile (Canal Beagle, Río Grande,

Isla Tierra del Fuego, Punta Arenas) y Venezuela

(Hampson, 1903). >

HOSPEDADORES: Magnoliales y Nothofagus ?

sp. (Angulo y Marticorena, 1993).

Scania nov. gen.

Especie tipo: Agrotis messium Guenée.

DIAGNOSIS: expansión alar 2,3 a 3,4 mm.

promedio; antenas ciliadas a fasciculadas; ojos

elabros; alas anteriores color castaño a castaño-

claro, reniforme bien notoria a excepción de Sca-

nia perornata (Koehler) y de Scania perlucida

(Koehler), claviforme poco definida; alas poste-

riores hialinas con los bordes salpicados de casta-

ño, sin bandas transversales, celda discal

generalmente con escamas oscuras, reniforme

con escamas oscuras.

GENITALIA: clásper aviforme, digitus presen-

te O ausente, valva con una leve escotadura me-

dial o “cuello hadenino”, presencia de corona

débil, yuxta cordiforme con una prominencia en

forma de espina, anellus con formación de lóbu-

los ornamentado con espinas; cornuti con una es-

pina de base bulbosa (“aceitera”) en algunos

casos y el número de espinas simples va desde

ninguna hasta seis; uncus grueso terminado en

punta roma con cuatro púas; saccus aguzado; en

la funda del aedeagus en algunas oportunidades

se presenta una espina triangular.

EpIFISIS: presenta una longitud de menos de

4 veces su ancho máximo, presenta sensilas tri-

coídeas en el collum epifisiario y estilocónicas en

el labellum, largo de los floccus 3 veces o menos

el ancho máximo de la epífisis, collum delgado,

terminando en una punta truncada o redondeada.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA: Argentina (Salta,

La Rioja, San Luis Daguerre, Pucará, Río Negro,

Buenos Aires, Tandil, Neuquén, San Martín de

los Andes, Bariloche, Esquel, Chubut, Ñorquin-

co,, Villa Unión, Nahuel Huapi, Comodoro Riva-

davia, Valle del Lago Blanco, Santa Fé)

(Koehler, 1959), Uruguay (Paysandú y Montevi-

deo) (Biezanko et al.., 1959) y Chile (Elqui, San-

tiago, Quilpué, Concepción, Cerro Campanario,

Jauja, Temuco, Río Blanco, Termas de Río Blan-

co, Curacautín, Maullín, Tranquilo, Río Bandu-

rrias, Puerto Montt, Puerto Aysén, Coyhaique,

Río Baker, Cochrane, Puerto Natales, Espora)

(Koehler, 1945).

HOSPEDEROS: herbáceas indígenas o sotobos-

ques. (Giganti et al., 1993). Cereales, alfalfa,

hortalizas, plantas de chacarería, empastada espe-

cialmente ballica y trébol rosado, gramíneas sil-

vestre, cultivadas y helechos (Artigas, 1993).

“Nolanáceas, Mirtáceas, helechos?” (Angu-

lo y Marticorena, 1993).

Etimología: del latín Scando = trepar.

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n.gen.: OLIVARES T. S.

CLAVE PARA SEPARAR LAS ESPECIES DEL GENERO SCAN/A NOV. GEN.

1. Más de 10 cerdas en el cucullus; corona con espinas fuertes, yuxta poco esbozada...oooooconccnnccnnnncs. 2

1”. Menos de 10 cerdas en el cucullus, corona con espinas débiles; yuxta muy desarrollada................. 4

2. Alas anteriores con manchas muy notorias; clásper con forma de “cabeza de pájaro” achatado ......3

2”. Alas anteriores con manchas poco notorias, clásper crenulado (Figs. 26 y 29) ...ooocccccocccccocccicnccinccannn

A E E E S. aspersa (Butler)

SEE CO pulalrix CONZASISTO patrono ein oo inn no cto SÍ A d S. perornata(Koehler)

SB usa co pu latir con un.solo signum: (Blg.3S).....coimiit lila ai S. messia (Gn)

4 (1”). Valvas del macho con * cuello hadenino” definido; epífisis podial con el flocecus 3 o menos veces

de largo que el ancho máximo, orbicular grande con escamas negras (Fig. 49). coooococccinccniccnnccnnoncnnnos

a a AS O E E TM A ER S. perlucida (Koehler)

4”. Valvas del macho con “cuello hadenino” poco definido; epífisis podial con el floccus 4 o más veces

delateoqueel ancho máximos. CAL o EIA. O Ii IA... COSTCIOaL. 1 NON 5

5(4”). Vesica con una espina de base bulbosa y ancha (“aceitera”) presente; clásper sin crenulado; pro-

[anieaciónide la yUxta ES piniiOTME cccocosonecanoonnonacion pa cd e OS 010 AO AS 6

5”. Vesica con una espina de base bulbosa ancha (aceitera) ausente; clásper con un fuerte crenulado;

pralonsación dea yuxta dio tÍfOLMO salte. tldiooceonnioneinaonnaprocetocnenenoccaio ao EA S. tephra (Koehler)

ASI esica del cormutitommado por una a:cuatro ESPINAS ta. etoslodanabata ddnticia to cacas. dad Acida he dali 7

ni esica del cornuti tormado por más de Cuatro ESPIAS terrano AI AN 8

MO) amellus liso; iclasper con dientes (Elo. 4) i:s...cooooooccnconiónesancaniannonacan cion d acid S. odontoclasper n. sp.

amellus ¡con espinas, clásper sin dientes (Els. 29). .eocctitadadac coso daaicdan ataco S. anelluspinata n.sp.

8 (6). Alas anteriores con tinte rojizo, clásper en su porción terminal fuertemente quitinizado (Figs. 47

O A Ra MIA E S. simillima (Koehler).

8”. Alas anteriores sin tinte rojizo; tercio medial del clásper crenulado ...cocococicinnonnnnnnnnnnncnocnnncnrnenenaneos 9

9(8”). Yuxta cordiforme de ápice romo, “aceitera”, con la base igual al largo de la espina (Fig. 65)........

S. strigigrapha (Koehler)

rr rr rr rr rr rr rr rr rss

DeNuta corditerme con apiceiagudo(Elg.32)l...oocmoniooenonesoncoonononsnonsoscosesopeoos S. neuquensis (Koehler).

Gayana Zool. 58(1), 1994

Scania anelluspinata n. sp.

(Figs.1,11,21,26 y 36)

Macho (Fig. 1): alas anteriores castaño-os-

curas, hacia el margen costal de la celda discal

escamas negras dispersas; bajo la celda discal en-

tre la Cul y la Cu2 en el lado dorsal, una línea

con escamas negras; abdomen, patágias, tégulas

de color castaño-oscuro; palpos labiales castaño-

oscuro; patas concoloras con tórax y abdomen;

antenas ciliadas. Alas posteriores blanquizcas

salpicadas por escamas castaño oscuras.

Eprrisis (Fig. 26): collum delgado muy agu-

zado terminado en punta, 3 veces el ancho máxi-

mo; floccus 4 veces el ancho máximo de la

epífisis; corpus muy globoso; largo de la epífisis

4.2 veces el ancho máximo de ésta; corpus y la-

bellum con sensilas.

EXPANSION ALAR: X= 23 mm.

GENITALIA (Fig. 11): uncus grueso terminado

en punta roma con cuatro púas; proceso del ane-

llus con dos lóbulos que presentan espinas de di-

ferentes tamaños; yuxta cordiforme con una

prolongación espiniforme poco quitinizada; clás-

per aviforme con la parte correspondiente a la ca-

beza corrugada en toda su longitud; saccus

redondeado; corona débil, con 14 cerdas; aedeagus

con cuatro espinas, una de ellas de base bulbosa.

HEMBRA: similar al macho.

GENITALIA (Fig. 21): apófisis posteriores el

doble del largo de las apófisis anteriores; sterig-

ma, ductus bursae, tergite fuertemente quitiniza-

do; cervix bursae enrollado sobre sí, corpus

bursae subgloboso; signum presente subovalado,

con microespinas en su interior.

MATERIAL EXAMINADO: 14 ejemplares: 1 Ho-

lotipo macho (gen. prep) Río Negro. El Mayoco.

3-Feb-1971. Cekalovic. Coll; 1 Alotipo hembra

Río Negro. El Mayoco. 3-Feb-1971. Cekalovic.

Coll, depositados en el MZUC; 10 Paratipos Río

Negro. El Mayoco. 3-Feb-1971. Cekalovic Coll,

depositados en el MZUC; 2 Paratipos. Río Ne-

gro. El Mayoco. 3-Feb-1971. Cekalovic Coll, de-

positados en el IML. Tucumán. Argentina.

ETIMOLOGIA: el nombre específico se basa en

las microespinas que presenta el annelus en la ge-

nitalia del macho.

OBSERVACIONES: Esta especie se asemeja a S.

neuquensis (Koehler) en la maculación de las

alas anteriores pero difiere en el color castaño

con las venas castaño-oscuras en las alas poste-

riores; en la genitalia del macho se asemeja a S.

perornata (Koehler) en el corrugado superior del

clásper pero difiere en la presencia de anellus con

espinas y en el número de espinas simples en el

aedeagus.

Scania aspersa (Butler) n. comb.

(Figs: 2,12:22,27y 37”)

Spodoptera aspersa Butler, 1882: 117.

Lycophotia aspersa (Butler). Hampson,

1903:562.

Lycophotia aspersa (Butler). Draudt en

Seiz, 1924: 72.

Peridroma aspersa (Butler). Biezanko, Ruf-

finelli et Carbonell, 1957:5.

Lycophotia aspersa (Butler). Koehler,

¡OSO ME

Paranicla aspersa (Butler). Koehler,

¡ESSE TUL

Pseudoleucania aspersa (Butler). Koehler,

1967:298.

Pseudoleucania bridarolliana Koehler,

1967:296. Nuevo sinónimo.

Paranicla bridarolliana (Koehler). Koehler,

1959: 109. Nuevo sinónimo.

Macho (fig. 2) “Alas anteriores de un more-

no gris variado con gris oscuro y escamas blan-

cas, tres puntos negros formando un triángulo y

en el centro de estos puntos se encuentra la man-

cha reniforme, la cual es de color gris y muy po-

co pronunciada, el área externa oscura, su borde

interno limitado sobre la costa por una mancha

negruzca orillada de blanquizco, debajo de ésta

cuatro puntos blanquizcos orillados de negro, los

cuales forman una serie transversa, una serie de

puntos muy pequeños y negros sobre el margen

orillado de moreno pálido. Las franjas atravesa-

das por dos líneas negruzcas, la externa muy pro-

nunciada y colocada cerca del borde, la cual es

blanca; alas posteriores de un blanco perla, semi-

transparente; las franjas atravesadas por una línea

gris pálida, bruscamente se ennegrece en el ápi-

ce, el tórax de un moreno gris, el abdomen gris

opaco, las alas por debajo con puntos marginales

negros, las anteriores de un moreno blanquizco

lustroso con el borde interno blanco; las franjas

grises con dos líneas delgadas y blancas, la una

en la base, la otra central.

Las posteriores blanco perla, con la costa

blanquizca salpicada de moreno, el cuerpo por

debajo gris moreno” (Butler, 1882).

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

GENITALIA (Fig. 12): “es prácticamente igual

al de la vecina especie L. messium, diferencián-

dose en la armadura del aedeagus que alberga so-

lamente dos espinas, una recta y otra curvada,

siendo tan larga como el ancho del pene, mien-

tras la segunda curvada, es más corta” (Koeh-

ler,1945). “Valvas 11-12 veces más largo que el

ancho máximo de ellas, con una escotadura en la

región medial del margen ventral. Clásper curva-

do sobre esta región, el ápice de éste es macizo y

de borde recto, muy irregular, algo aserrado, un-

cus con un ensanchamiento en la región dorsal en

su mitad posterior, en la parte anterior se estrecha

y sus lados son subconvergentes, de ápice redon-

deado, en él hay dos espinas subiguales en tama-

ño y de posición ventral” (Parra et al., 1986).

Epífisis (Fig. 27): largo de la epífisis 3.1

veces el ancho máximo de ésta; collum delgado 5

veces el ancho máximo de la epífisis; floccus epi-

fisiarios 4.5 veces el ancho máximo de la epífisis.

EXPANSION ALAR: X= 31 mm

EXPANSION ALAR: “32 mm.” (op.cit.)

PATRIA: Chile.(op.cit.)

HABITAT: “Comodoro Rivadavia” (Koehler,

1945). “Proceden de San Martín de los Andes,

Villa Unión, La Rioja, 1900 m y Cafayate, Salta,

Nahuel Huapi, Neuquén, San Martín de los An-

des, Esquel, Chubut” (Koehler,1959). “Peridro-

ma (Anicla) aspersa (Colonia, Estanzuela,

Uruguay” Biezanko et al. (1959).

HEMBRA: similar al macho

GENITALIA (Fig. 22): apófisis anteriores de

igual longitud que apófisis posteriores; sterigma

y ostium bursae fuertemente quitinizado; corpus

bursae subgloboso; cervix bursae subrecto; cor-

pus bursae una y media vez el cervix bursae; sig-

num presente, alargado con microespinas en el

interior.

MATERIAL EXAMINADO: 282 ejemplares: Foto-

tipo macho Spodoptera aspersa, Chili, Edmonds.

82-104 (Depositado en el Museo Británico de

Historia Natural de London), 1 Paratipo Parani-

cla bridarolliana det. Koehler 1-1951. S.M. An-

des. P. Nac. Lanín. 1. Schajovskoi. Colección.

Instituto y Fundación Miguel Lillo. S.M. Tucu-

mán. Tucumán Argentina..Concepción 6-1-59.

Trampas Coll; Cobquecura 12-29-1972. Ramírez

Coll; Concepción 28-1-59. Trampas Coll; Con-

cepción 1-XI- 58. Trampas Coll; Concepción 13-

I- 59 Trampas Coll; Concepción 13-I- 59

Trampas Coll; Concepción 20-I- 59 Trampas

Coll; Concepción 2-II- 59 Trampas Coll; Con-

cepción 13-III- 59 Trampas Coll; Concepción 28-

E 59 Trampas Coll; Concepción 17-I- 59 Tram-

pas Coll; Concepción 8-I- 59 Trampas Coll; 2

ejemplares Concepción 14-I- 59 Trampas Coll;

Concepción 29-I- 59 Trampas Coll; Concepción

12-I11- 59 Trampas Coll; Concepción 3-I- 59

Trampas Coll; Chillán 1-MI- 1960 Trampas Coll;

Concepción 30-XII- 58 Trampas Coll; Concep-

ción 7-XI- 58 Trampas Coll; Concepción 22-XT-

58 Trampas Coll; Concepción 25-XI- 58 Tram-

pas Coll; Concepción 29-XII- 58 Trampas Coll;

Concepción 11-Nov- 58 Trampas Coll; Concep-

ción 10-XI- 58 Trampas Coll; Concepción 14-

XI- 58 Trampas Coll; Concepción 23-XII- 58

Trampas Coll; Concepción 22-XII- 58 Trampas

Coll; 2 ejemplares Concepción 14-XI- 58 Tram-

pas Coll; Concepción 19-XI- 58 Trampas Coll;

Concepción 12-XI- 58 Trampas Coll; Concep-

ción 10-XI- 58 Trampas Coll; Concepción 4-

XIII-58 Trampas Coll; Concepción 1-XI- 58

Trampas Coll; Concepción 27-XII- 58 Trampas

Coll; Concepción 22-I- 1960 Trampas Coll; Con-

cepción 3-III- 1960 Trampas Coll; Concepción 5-

I- 59 Trampas Coll; Concepción 17-XI- 58

Trampas Coll; 2 ejemplares Cobquecura Enero

12-29, 1972. Ramírez Coll. Concepción 21-X- 60

Trampas Coll; Concepción 14-I- 59 Trampas

Coll; 7 ejemplares Concepción 22-I- 59 Trampas

Coll; 3 ejemplares Concepción 24-I- 59 Trampas

Coll; 5 ejemplares Concepción 20-I-59 Trampas

Coll; 3 ejemplares Concepción 19-I- 59 Trampas

Coll; 2 ejemplares Concepción 9-II- 59 Trampas

Coll;3 ejemplares Concepción 17-L- 59 Trampas

Coll; Concepción 3-X- 59 Trampas Coll: Con-

cepción 25-II- 60 Trampas Coll. Fototrópica:

Concepción 5-II- 59 Trampas Coll. Fototrópica:

Concepción 1-XI- 58 Trampas Coll. Fototrópica:

Concepción 8-X- 60 Trampas Coll; 3 ejemplares

Chillán 25-I1-60. Trampas Coll; Concepción 15-

X- 60 Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

14-X- 60 Trampas Coll; Concepción 5-1-59

Trampas Coll; 6 ejemplares Concepción 21-I- 60

Trampas Coll. Fototrópica: Concepción 7-HI- 60

Trampas Coll; Concepción 29-XIHl- 58 Trampas

Coll; Concepción 25-XI- 58 Trampas Coll: Con-

cepción 16-1- 59 Trampas Coll. Fototrópica: 1

ejemplar (gen. prep.) Concepción 22-X- 59

Trampas Coll. Chile. Sud América; Concepción

22-I- 60 Trampas Coll; 3 ejemplares Concepción

12-X-60 Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

13-X- 60 Trampas Coll. Chile. Sud América; 3

ejemplares Concepción 13-I- 59 Trampas Coll.

Gayana Zool. 58(1), 1994

Fototrópica; Concepción 16-X- 60 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 11-IV-60 Trampas Coll.

Chile. Sud América; Concepción 29-XII- 58

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 23-XII-

58 Trampas Coll; Concepción 11-Nov- 58 Tram-

pas Coll; Concepción 5-XI- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 13-XI- 59 Trampas

Coll; Catillo 4-marzo- 1972 Trampas Coll. Foto-

trópica; Concepción 4-III- 59 Trampas Coll. Fo-

totrópica; Concepción 3-XI- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Antillanca 12-I1I-85. Jana Coll; Sta.

Julia Km 25 C. Bulnes. 18-X-1981. Trampas

Coll; Concepción 2-III- 60 Trampas Coll. Foto-

trópica; Concepción 4-III- 60 Trampas Coll. Fo-

totrópica; Pto. Natales, Feb. 1953, Alarcón Coll;

2 ejemplares Cobquecura. Enero 12-29. 1972.

Ramirez Coll; 9 ejemplares Chaitas 28-1-82.

Trampas Coll; Concepción 10-marzo-1972. Foto-

trópica Coll; 2 ejemplares Chile. Cautín. Choroi-

co. Feb. 1989, J. Artigas; Llanquihue. Chamiza.

28. Feb. 1972. Stange Coll; Concepción 14-I- 59

Trampas Coll. Fototrópica; yaiuivia 25-8-85.

Trampas Coll; Sta. Julia. Km 25. C.B. 26-3-82.

Trampas Coll; 2 ejemplares Pta. Arenas. 6 Feb.

1960. Cekalovic Coll; 3-I111-59. KRAMMER;

Chillán, enero 24, 1962. Trampas Coll; Chillán

12-11-60. Trampas Coll. Fototrópica; 2 ejempla-

res Concepción 20-I-60. Trampas Coll. Fototró-

pica; Concepción 11-IV-59 Trampas Coll.

Fototrópica; tobalaba 21 Nov. 46; 2 ejemplares

Concepción 20-I- 59 Trampas Coll. Fototrópica;

Llo-Lleo 14-sep-1971. Ramírez Coll; Concep-

ción 16-III- 59 Trampas Coll. Fototrópica; Con-

cepción 5-I- 59 Trampas. Coll. Fototrópica;

Concepción 26-III- 58 Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Concepción 9-III-60 Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Maullín 9-XII-1942; Concepción 24- X- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 26-ITI-

58. J.A.C. Coll; Concepción 9-III- 60 Trampas

Coll; Concepción 27-X- 58 Trampas Coll. Foto-

trópica; Concepción 6-III- 59 Trampas Coll. Fo-

totrópica; Concepción 3-XIl- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; 2 ejemplares Concepción 10-I- 59

¿Trampas Coll. Fototrópica; 4 ejemplares Chaitas

28-1-82. Trampas Coll; Sta. Julia Km 25. C. Bul-

nes. 18-X-1981. Trampas Coll; Concepción 1-I-

60 Trampas Coll. Fototrópica; Chillán 1-XI-59.

Trampas Coll; Concepción 11-III- 59 Trampas

Coll. Fototrópica; Chile. IX Región. Marzo 18,

1990. C. Carrasco Coll; Concepción 16-III- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Chillán 2-XII-59.

Trampas Coll; Sta. Julia 8-3-82. Trampas Coll;

Catillo 17-marzo-1972. Trampas Coll; Concep-

ción 22-X- 60 Trampas Coll. Fototrópica; Con-

cepción 7-II- 59 Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 8-X- 60 Trampas Coll. Fototrópica;

2 ejemplares Concepción 3-III- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 23-III- 59 Trampas

Coll. Fototrópica; Concepción 7-XI- 59 Trampas

Coll. Fototrópica; Chillán 1-XII-51 Trampas

Coll; Concepción 9-X- 60 Trampas Coll. Foto-

trópica; Tobalaba 20- Nov- 1946; Concepción 9-

IM- 60 Trampas Coll. Fototrópica; 2 ejemplares

Manquimávida 27-IV-60. Trampas Coll. Fototró-

pica; Concepción 25-IV-60 Trampas Coll. Foto-

trópica; Concepción 22-III- 60 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 26-I-59 Trampas Coll.

Fototrópica; Chillán 23-XI-59. Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 2-X- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 5-X- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 15-X-60 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 17-X- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 22-X- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; 3 ejemplares Concepción 29-XII- 58

Trampas Coll. Fototrópica; 2 ejemplares 25-X-

59; Concepción 26-III- 59. J.A.C. Coll ; Concep-

ción 22-X- 58 Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 2-XIl- 58 Trampas Coll. Fototrópi-

ca; 2 ejemplares Concepción 23-I- 59 Trampas

Coll. Fototrópica; Concepción 5-II- 59 Trampas

Coll. Fototrópica; 2 ejemplares Concepción 19-

X- 59 Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 9-

X- 59 Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

26-1- 59 Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

16-IX- 59 Trampas Coll. Fototrópica; Concep-

ción 28-I- 59 Trampas Coll. Fototrópica; Con-

cepción 27-X- 59 Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 30-X- 59 Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 24-X- 59 Trampas Coll. Fototrópica;

3 ejemplares Concepción 4-XI- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 3-I- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; 2 ejemplares Concepción 8-XI- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 3-XI- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 3-I- 59

Trampas Coll. Fototrópica; 4 ejemplares Concep-

ción 2-I1- 59 Trampas Coll. Fototrópica; 2 ejem-

plares Concepción 10-I- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; 2 ejemplares Concepción 5-I- 59

Trampas Coll. Fototrópica; 3 ejemplares Concep-

ción 12-1- 59 Trampas Coll. Fototrópica; Con-

cepción 7-1- 59 Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 27-1- 59 Trampas Coil. Fototrópica;

Concepción 14-XI- 58 Trampas Col. Fototrópi-

ca; Concepción 12-III- 59 Trampas Coll. Fototró-

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n.gen.: OLIVARES T. S.

pica; 2 ejemplares Concepción 5-I- 59 Trampas

Coll. Fototrópica; 2 ejemplares Concepción 19-

II- 59 Trampas Coll. Fototrópica; 2 ejemplares

Concepción 14-I- 59 Trampas Coll. Fototrópica;

4 ejemplares Concepción 8-I- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; 2 ejemplares Concepción 29-I- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 19-1- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 14-II- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 16-X- 60

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 22-I1I-

60 Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 14-I-

58 Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 11-X-

60 Trampas Coll. Fototrópica (Lycophotia asper-

sa Btlr. Det. E. Todd); Concepción 26-I- 59. H.E.

Coll. ; Concepción 7-IV- 59 Trampas Coll. Foto-

trópica; Concepción 8-XI- 59 Trampas Coll. Fo-

totrópica; 3 ejemplares Concepción 5-1- 60

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 30-I- 60

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 3-I- 59

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 3-I- 60

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 16-XI-

59 Trampas Coll. Fototrópica; 8 ejemplares Con-

cepción 15-III- 60 Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 2-XII- 59 Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Concepción 12-III- 60 Trampas Coll. Fototró-

pica; Concepción 14-X- 59 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 9-III- 60 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 9-IV-60 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 3-V- 60 Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 11-IV- 60 Trampas

Coll. Fototrópica.

Scania messia (Guenée) n. comb.

(Figs. 3,13,23,28 y 38)

Agrotis messium Guenée, 1852.

Eycophotia messia (Guenée) Hampson, 1903.

Peridroma (Hemieuxoa) messia (Guenée).

Forbes, 1933 : 26.

Lycophotia messium (Guenée) Koehler,

(1958) 1959:105.

Peridroma (Anicla) messium (Guenée). Bie-

zanko, Ruffinelli y Carbonell 1957: 59.

Pseudoleucania ferruginescens (Blanchard).

(Parra et al.,1986) (error identificación) ; Koehler

(1945) (error identificación); (Angulo y Weigert,

1975) (error identificación).

Tiro: probablemente perdido.

Macho: (Fig. 3) “Alas anteriores de un blan-

co tierno, finamente estriado con castaño marrón,

con toda la costa, hasta la subterminal y las dos

líneas medianas gemelas, del mismo castaño,

manchas bien marcadas, pero un poco perdido en

el castaño, sobre todo la reniforme, la orbicular

muy redondeada, fuertemente rodeada y pupilada

de castaño oscuro, claviforme pequeña, línea

subterminal un poco nula, borde terminal y franja

concolora.

Alas posteriores de un blanco puro un poco

irisada, con el ángulo externo un poco castaño,

por debajo con la costa, un pequeño punto celular

y una serie de puntos castaños, parte anterior de

un collar castaño” (trad: Guenée, 1852).

EprrIsIS (Fig. 28): largo de la epífisis 3.8 ve-

ces el ancho máximo de ésta; collum delgado, 6

veces el ancho máximo de la epífisis; floccus 4.8

veces el ancho máximo de la epífisis; labellum

alcanza el ápice del collum; sensilas presentes en

corpus y labellum, collum grueso, 3.5 veces el

ancho máximo de la epífisis.

EXPANSION ALAR: X= 31.6 mm

PATRIA: “No se conoce la patria” (op.cit.).

HABITAT: “Buenos Aires, Tandil, La Rioja,

Santa Fé” (Koehler,1945)

“P. (H?) messia, Chile” (Forbes,1933)

“Peridroma (Anicla ) messium Guenée; Co-

lonia (Estanzuela, Puntas Arenal); Montevideo

(Colón); Paysandú” (Biezanko et al., 1959).

GENITALIA (Fig. 13): clásper delgado termi-

nado en cuatro púas, dos pares subiguales en ta-

maño; clásper aviforme con un levantamiento en

la parte dorsal de dicho clásper, el clásper pre-

senta un doblado ventralmente; saccus redondea-

do, corona fuerte; aedeagus con un rango de 2 a 6

espinas simples.

HEMBRA: alas anteriores con escamas casta-

ño-claras a castaño-marrón; margen costal del ala

con escamas castaño-oscuras, banda terminal con

puntos de escamas castaño-oscuras, banda ante-

rior y banda posterior transversa notorias con es-

camas castaño-oscuras; mancha orbicular

castaño-oscuras delimitadas por escamas castaño-

claras y luego por escamas castaño-oscuras; cla-

viforme castaño-clara delimitada por escamas

castaño oscuras; reniforme con escamas castaño-

oscuras y castaño-rojizas delimitadas por esca-

mas castaño-claras y luego por escamas castaño-

oscuras; patas, patagias, tégulas de color castaño

claro salpicado de escamas castaño-oscuras; ca-

beza y palpos con escamas castaño-rojizas; ante-

nas ciliadas. Alas posteriores blanquizcas, bordes

delimitados por escamas castaño-oscuras.

GENITALIA (Fig. 23): apófisis anteriores de

igual longitud que apófisis posteriores; sterigma

Gayana Zool. 58(1), 1994

y ostium bursae fuertemente quitinizado; corpus

bursae comienza subrecto terminando subglobo-

so; cervix bursae enrollado sobre si mismo dando

tres vueltas; signum presente, alargado con mi-

croespinas en el interior.

MATERIAL EXAMINADO: 263 ejemplares: Con-

cepción, 2-I1-60. Trampas Coll. (Lycophotia min-

na Butler) (gen. pre.p); 1 ejemplar (gen. prep)

Concepción, 13-X-60, Trampas Coll.; 1 ejemplar

(gen. prep.) Chile, IX Región, Jauja, marzo 18,

1990, Carrasco Coll ; 1 ejemplar (gen. prep. )

Chile, Concepción, 1-15-octubre-1987. Trampas

U.V Coll.; 1 ejemplar (gen. prep.) Chillán, 4 -II-

60. Trampas Coll.; 1 ejemplar (gen. prep.) Con-

cepción, 9-I1-60. Trampas Coll.; Concepción

22-X-59. Trampas Coll.; Pto Montt, 25/10/89,

Godoy Coll.; Maullín, 15-2-42; Concepción, 12-

II1-60, Trampas Coll, Fototrópica; Concepción,

15-11-60, Trampas Coll., Fototrópica; Concep-

ción, 15-IV- 61, Trampas Coll., Fototrópica;

Concepción, 4-X-60. Trampas Coll., Fototrópica;

Concepción 22-IX-60, Tramp.>” CS!l., Fototrópi-

ca; Concepción 10-X-59, Trampas Coll., Con-

cepción, 5-X-60, Trampas Coll., Fototrópica;

Concepción 16-V-61, Trampas Coll., Fototrópi-

ca; Concepción 20-IX-60; Trampas Coll., Foto-

trópica;Concepción, Santa Julia, 5-marzo-1971.

Trampas Coll.; Maullín 14-2-42; Concepción,

15-X-60, Trampas Col.; Concepción, 12-1-59,

Trampas Coll; Fototrópica; Concepción, Sta. Ju-

lia, Km 25. Cam. Bulnes, 5-marzo-1971, Tram-

pas Coll.; Concepción, 5-XI-59; Trampas Coll.;

Concepción, 15-X-60, Trampas Coll., Fototrópi-

ca; Concepción 22-II1-60. Trampas Coll.; Chillán

26-III-60, Trampas Coll.; Chillán 26-I11-60,

Trampas Coll.; Concepción 3-V-60 Trampas

Coll.; Concepción 3-IV-60,Concepción 7-IV-60,

Trampas Coll.; Concepción 8-1-59, Trampas

Coll; Guayacán, Stgo., 24-X-51, Concepción 12-

IT1-60, Trampas Coll., Fototrópica, Concepción

2-XI-59, Trampas Coll., Fototrópica; Concep-

ción, 23-II1-60, Trampas Coll.; Concepción, 6-

IV-60, Trampas Coll.; Concepción 6-X-59,

Trampas Coll.; Chaitén, 28-I-82, Trampas Coll.;

Concepción 23-X-59, Trampas Coll.; Concep-

ción, 24-X-59, Trampas Coll.; Concepción, 4-I1I-

59, Trampas Coll.; Concepción, 26-I-59. H.E.

Coll, Fototrópica; Concepción, 27-X-59, Tram-

pas Coll., Fototrópica; Concepción, 4-XI-59,

Trampas Coll., Concepción, 26-1-59; Concep-

ción, 20-IX-59; Concepción, 29-X-59; Trampas

Coll.; Concepción, 10-XI-59; Trampas Coll.

Concepción, 2-IV-59; Trampas Coll. Concep-

ción, 23-XII-58, Trampas Coll.; Concepción, 9-

X-59, Trampas Coll.; Concepción, 29-1-59;

Trampas Coll.; Concepción, 19-V-60; Trampas

Coll.; 20-X-60, Krahmer; Concepción; 17-X-58,

Trampas Coll., Fototrópica; Concepción, Lag.

San Pedro I-5-Feb-1970, Trampas U.V Coll.;

Chillán, 24-IX-59, Trampas Coll.; 2 ej. Chile,

Santiago, Prov. Maipú, Qbrda. La Plata. 510 m.

Malaise. 33%31”S, 70% 47"W, 24-IV-1967. N. Hi-

chins O.; 2 ej. Guanaquero, 12-XI- 1978, Angulo

Coll; Concepción, 29-VII-60, Trampas Coll; Es-

pora. 4 Dic. 1953. Rodríguez Coll., Chile. Maga-

llanes, 2 ej. Cobquecura, enero. 12-29-1972.

Ramírez Coll.; Concepción, 17-IX-60, Trampas

Coll.; 3 ej. Los Lagos 14- Feb-1973, Moreno

Coll.; Chillán 16-X-59, Trampas Coll., Fototrópi-

ca; Concepción 27-II-60, Trampas Coll., Fototró-

pica; Concepción 26-II1I-59, J.A.C. Coll.;

Concepción, 22-11-60, Trampas Coll., Fototrópi-

ca; Concepción, 3-X-59, Trampas Coll.; Concep-

ción 23-Marzo-1975, Weigert Coll.; Concepción

16-11-59, Trampas Coll., Fototrópica; Chamiza

20- Feb-1973. Cekalovic Coll.; Chillán 7-X-59.

Trampas Coll., Fototrópica, Concepción 27-IX-

60, Trampas Coll; Rinconada. Maipú. Santiago.

26-IV-63; 2 ej. Concepción 19-V-60. Trampas

Coll. Fototrópica; Concepción 4-V-60. Trampas

Coll. Fototrópica, Concepción 15-V-60. Trampas

Coll. Fototrópica; Concepción 10-III-60. Tram-

pas Coll. Fototrópica; 2 ej. Concepción 22-IV-

60. Trampas Col!. Fototrópica; Concepción

12-V-60. Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

15-V-60. Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

10-III-60. Trampas Coll. Fototrópica; Concep-

ción n. Trampas Col!; Curacautín 13-2- 1950;

Concepción 13-X-59; Concepción 17-X-60.

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción 5-X-60.

Trampas Coll. Fototrópica; Valdivia 25-8-85,

Trampas Coll., Chillán 24-IV-60; Chillán 14-X-

59; Concepción 6-IV-60. Trampas Coll; Tres

Puentes, Feb. 1953, Rodríguez Coll, Magallanes,

Chile; Concepción 22-IV-61, Trampas Coll.;

Chillán, 10-III-60, Trampas Coll; Cap. Pastene,

21.1.52; Concepción, 14-III-59, Trampas Coll.;

Concepción 7-I1I-60, Trampas Coll.; Curacautín

23-IX-1948; Concepción 16-1-59. Trampas Coll..

Fototrópica; Concepción, 5-II1-59. Trampas

Coll.; Concepción, 3-II1-59. Trampas Coll.; Con-

cepción, 3-XII-59. Trampas Coll!; Concepción,

9-III-60. Trampas Coll.; Concepción 18-III-59.

Trampas Coll.; Chaitén 28-I-82. Trampas Coll.; 2

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. $.

ej. Concepción 4-III-60. Trampas Coll.; Concep-

ción, 18-I1I-60. Trampas Coll.; Concepción, 25-

III-60. Trampas Coll.; Concepción 23-III-60.

Trampas Coll.; Concepción, 28-III-60. Trampas

Coll.; Concepción 22-III-60. Trampas Coll.;

Concepción 18-V-60, Trampas Coll.; Concep-

ción, I-IV-60. Trampas Coll.: Concepción, 5-I-

59. Trampas Coll.; Concepción, 17-IV-60.

Trampas Coll.; Chillán, 17-IM-60.Trampas Coll.;

Chillán, 4-111-60. Trampas Coll.; Concepción,

26-XI-1958; Concepción. 5-X-59; Concepción,

5-X-59; Concepción, 30-IX-60; Concepción, 14-

III-59. Trampas Coll.; Concepción, 26-IX-60.

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción, 24-IX-

59. Trampas Coll., Fototrópica; Concepción, 4-

V-60. Trampas Coll. Fototrópica; Chillán,

3-V-60. Trampas Coll. Fototrópica; Concepción,

25-VIII-60. Trampas Coll. Fototrópica; Concep-

ción, 25-IV-60. Trampas Coll. Fototrópica; Con-

cepción, 20-X-59. Trampas Coll.; Chillán,

28-III-60. Trampas Coll.; Concepción, 20-X-60.

Trampas Coll. Fototrópica; Concepción, 18-VIII-

60. Trampas Coll.; Concepción 7-X-59, Trampas

Coll.; Concepción, 25-VIII-60. Trampas Coll.;

Concepción 9-X-59. Trampas Coll.; Concepción

15-IX-60 Trampas Coll.; Chillán 6-X-59. Tram-

pas Coll.; Chillán, 6-X-59 Trampas Coll. Foto-

trópica; Concepción 14-X-60. Trampas Coll.

Fototrópica; Concepción 10-III-60. Trampas

Coll. Fototrópica; Concepción 2-II-60. Trampas

Coll. Fototrópica; Concepción 3-V-60. Trampas

Coll. Fototrópica; Concepción 5-IV-60. Trampas

Coll. Fototrópica; 3 ejemplares Chillán 28-11-60.

Trampas Coll. Fototrópica; 7 ejemplares Concep-

ción 6-IV-60. Trampas Coll. Fototrópica; Con-

cepción 20-III-60. Trampas Coll. Fototrópica; 2

ejemplares Concepción 1-IV-60. Trampas Coll.

Fototrópica; 3 ejemplares Chillán 26-III-60.

Trampas Coll. Fototrópica; 3 ejemplares Chillán

20-IV-60. Trampas Coll., Fototrópica; Concep-

ción 22-IV-60 Trampas Coll. Fototrópica; 2

ejemplares 18-IV-60. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 17-IV-60. Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Concepción 19-IV-60. Trampas Coll. Foto-

trópica; Manquimávida 27-11-60. Trampas Coll.;

Concepción 26-III-60 Trampas Coll.; Concep-

ción 18-IV-60. Trampas Coll.; Concepción 25-

IV-60. Trampas Coll.; Concepción 19-IV-60.

Trampas Coll.; Manquimávida 29-IV-60. Tram-

pas Coll.; Chillán 24-IV-60. Trampas Coll.; Chi-

llán 7-X-59. Trampas Coll.; Concepción

10-I11-60. Trampas Coll. Fototrópica (gen. prep.);

Chile IX Región, Jauja, marzo 18, 1990. C. Ca-

rrasco, Coll.; Chile, Ñuble, Coihueco., mayo,

1988, C. Carrasco (gen. prep.); Concepción, 23-

HII-60. Trampas Coll. Fototrópica.; Chillán 24-X-

59. Trampas Coll. Fototrópica (gen. prep); Pto.

Montt 5-12-89. Godoy Coll. (gen. prep); Concep-

ción 18-II11-60. Trampas Coll. Fototrópica; Rin-

conada, Maipú 1963. En Trampa de luz. 3-V1-63.

Peña; Coyhaique 26-1-85. Villalba Coll.; Con-

cepción 4-I11-60. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 4-III-60. Trampas Coll. Fototrópica;

Chillán 9-X-59. Trampas Coll. Fototrópica; Con-

cepción 3-I11-60. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 20-XII-58. Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Chillán 16-X-59. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 4-I1I-60. Trampas Coll. Fototrópica;

Chillán 28-X-59. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 6-II-59. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 15-IV-59. Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Chillán 1-XII-59. Trampas Coll.; Concepción

Sta. Julia. 25-marzo 1971. Trampas Coll.; Con-

cepción 4-II1-59. Trampas Coll.; Concepción 18-

IV-60. Trampas Coll.; Concepción 5-VI-60.

Trampas Coll.; Concepción 10-V-60. Trampas

Coll.; Valdivia 25-8-85. Trampas Coll.; Concep-

ción 23-8-58. Trampas Coll. Fototrópica; Valdi-

via 25-8-85. Trampas Coll.; Concepción

23-X-59. Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

6-X-59. Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

29-XII-58. Trampas Coll. Fototrópica; Concep-

ción 24-X-58. Trampas Coll.; 2 ejemplares Con-

cepción 11-X-60. Trampas Coll. Fototrópica:

Concepción 12-X-60. Trampas Coll.; Concep-

ción 17-MMI-61. Trampas Coll. Fototrópica: Con-

cepción 20-III-61. Trampas Coll. Fototrópica;

Chillán 12-I1I-60. Trampas Coll. Fototrópica:

Concepción 8-I!1-60. Trampas Coll. Fototrópica:

2 ejemplares Chillán 17-I11-60. Trampas Coll.:

Concepción 6-II11-60. Trampas Coll. Fototrópica:

Chillán 1-X-59. Trampas Coll.; Concepción.

Chile. Parque Bot. Hualpén. 10-15-Feb-1970.

Trampas Malaise Coll.; 2 ejemplares Concepción

13-I11-60.Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

14-III-60. Trampas Coll. Fototrópica: Concep-

ción 30-X-60. Trampas Coll. Fototrópica: Con-

cepción 6-III-60. Trampas Coll. Fototrópica:

Chillán 24-X-59. Trampas Coll. Fototrópica:;

Concepción 12-X-60. Trampas Coll.; Concep-

ción 2-III-60. Trampas Coll. Fototrópica: Con-

cepción 22-IV-60. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 12-II1-60. Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Concepción 11-X-60. Trampas Coll. Fototró-

Gayana Zool. 58(1), 1994

pica; Chillán 30-IV-60. Trampas Coll. Fototrópi-

ca; Concepción 15-IX-60. Trampas Coll. Foto-

trópica; Concepción 14-1X-60. Trampas Coll.;

Tobalaba 12-IX-1948; Concepción 21-IX-60.

Trampas Coll.; Chillán Abr..23. 1962. Trampas

Coll. Peña; Sta. Julia 8-3-1982. Trampas Coll.,

Chillán 17-11-60. Trampas Coll. Fototrópica;

Concepción 1-X-59. Trampas Coll.; Concepción

5-IV-60. Trampas Coll. Fototrópica; Concepción

18-IV-60. Trampas Coll. Fototrópica; Curacaví

6-Nov-1948; Chillán 17-11-60. Trampas Coll.;

Concepción 26-VIII-60. Trampas Coll. Fototró-

pica; Chillán 8-XI-59. Trampas Coll.; Chillán 12-

MII-60. Trampas Coll.; Valdivia 25-8-85.

Trampas Coll.; Concepción 3-II-60; 2 ejemplares

Concepción 22-1-60; Concepción 24-III-60; Con-

cepción 20-I-60; Concepción 20-I-59; CICA,

Arica 2-VIII-69. Ob. Lab. H. Vargas C.; Concep-

ción, 17-XII-58, 2 ejemplares Concepción 19-X-

58; Concepción, 5-V-57; Concepción, 20-X-58;

Concepción, 29-X-58; Concepción, 13-X-58 ;

Concepción, 1 -XI-58; Concepción, 3-XI-19538;

Concepción, 9-X-60; Cocharcas 2-XI - 57. W.

Coll.; Concepción, 31-X-58; Concepción, 19-X-

59; Concepción, 26-1-59; Concepción, 24-X-58;

Concepción 29-XII-58.

Scania neuquensis (Koehler) n. comb.

(Figs. 4,14,29 y 39)

Paranicla neuquensis (Koehler). Koehler,

1959:116.

Pseudoleucania neuguensis (Koehler).

Koehler, 1967:313.

Macho (Fig. 4): “Color general de pardo os-

curo, tórax, cabeza y patagias de color básico,

patagias con banda negra, frente pardo negruzco,

patas de pardo más oscuro salpicado de negro,

abdomen más claro con pelos más claros todavía

en su origen.

Alas anteriores de color general, sin fajas,

células de pardo casi negro, del mismo color una

ancha raya de la base incluye la claviforme y ter-

mina con ella, orbicular redonda marcada, pare-

ciendo ser una falla de color negro intercelular,

reniforme un punto negro delante de la Dc, muy

finos puntos marginales, franjas concoloras con

dos finísimas líneas más pálidas. Alas posteriores

blancas, sedosas, transparentes e irisantes, franjas

blancas. en la faz inferior y en ambas alas la De

designados por un punto” (Koehler, 1959).

EprrIsIs (Fig. 29): largo de la epífisis 5 veces

el ancho máximo de ésta, collum- grueso 2.85 ve-

ces el ancho máximo del corpus; el corpus pre-

senta sensilas tricoídeas y el labellum sensilas

estilocónicas, floccus 3 veces el ancho máximo

de la epífisis.

EXPANSION ALAR: X= 27.6 mm.

GENITALIA (Fig. 14 ): “valvas con una sola

sinuosidad y con bordes paralelos desde la suave

escotadura hacia afuera, corona débil, yuxta con

proceso muy reducido, harpe alargado en el cen-

tro y a lo largo de la valva con una punta muy re-

forzada y ennegrecida” (op.cit.)

Saccus agudo, clásper con una prominencia,

se continúa con un corrugado en la parte supe-

rior, yuxta cordiforme, en el centro presenta una

quitinización, aedeagus con cinco espinas sim-

ples y una pequeña aceitera.

ENVERGADURA ALAR: “32-36 mm” (op. cit).

PATRIA: “Bariloche, Neuquén, San Martín de

los Andes, Neuquén” (op. cit.).

“Difiere de P. strigigrapha por la falta de lí-

neas a lo largo de las nervaduras y por carencia

de rayas blancas” (op. cit.).

HEMBRA: similar al macho.

GENITALIA: apófisis anteriores igual que el

largo de las apófisis posteriores; esterigma, Os-

tium bursae y ductus bursae fuertemente quitini-

zados; corpus bursae subgloboso; cervix bursae

subrecto; corpus bursae una y media vez el cer-

vix bursae; signum presente, redondeado con mi-

croespinas en la parte interna.

MATERIAL EXAMINADO: 6 ejemplares: 1 ma-

cho Paratipo. (prep. 804) S. Martín de 1. Andes.

Colección Inst. Fund. Miguel Lillo (4000) S.M.

Tucumán. Tucumán. Argentina. Ex. Colección P.

Koehler; 3 hembras: 1 ejemplar (gen. prep.) Ter-

mas de Río Blanco. Cautín. 3-51 ;1 ejemplar

(gen. prep.) Termas de Río Blanco. 22- II-60.

Krammer. CICA. ; Lonquimay. 8-3-1951; 2 ma-

chos: 1 ejemplar (gen. prep.) Río Murta 300 m.

7-8- 11-1990. Aysén ; 1 ejemplar (gen. prep.) Río

Bandurrias. Coyhaique. Aysén. 8-9- II-1990.

Trampas Coll. ,

Scania odontoclasper n. sp

(Figs. 5,15,30 y 40)

Macho (fig. 5): alas anteriores castaño-0s-

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

curas, salpicado con algunas escamas castaño-

rojizas, en el borde distal escamas negras que

asemejan un punto difuso, venas cubiertas con

escamas blancas lo que le da un aspecto rayado,

celda discal con escamas negras formando una

franja, en la base de esta celda otra franja con es-

camas negras, bajo ésta, en su ápice ventral una

mancha formada por escamas castaño-rojizas, ab-

domen castaño-oscuro, tégulas del mismo color,

palpos de color castaño-claro salpicado con esca-

mas negras; patagias de color castaño-claro con

algunas escamas castaño-rojizas; antenas ciliadas

de igual ancho que la antena; patas castaño-claras

salpicadas con escamas negras.

EprrIsIs (Fig. 29): largo de la epífisis 3 veces

el ancho máximo de ésta; floccus 4.5 veces el an-

cho máximo de la epífisis; collum grueso ; cor-

pus y labellum con sensilas.

EXPANSION ALAR: X= 34 mm

GENITALIA (Fig. 15): uncus grueso, termina-

do en punta roma, con cuatro púas; valva de cue-

llo hadenino poco pronunciado, corona débil con

sólo siete cerdas; clásper aviforme fuertemente

curvado presentando en su parte ventral inferior

unas denticiones; yuxta con un proceso espinifor-

me poco desarrollado, quitinizado, el cucullus

presenta en su borde 6 cerdas dispersas pero muy

notorias, aedeagus con un cornuti compuesto de

cuatro espinas, una de ellas de base bulbosa poco

desarrollada; en el interior de la funda del aedea-

gus una pequeña espina de forma triangular.

MATERIAL EXAMINADO: 4 ejemplares: 1 Holo-

tipo (gen. prep.) Campanario 8-1-1949; 1 Alotipo

hembra (gen. prep.) Río Bandurrias. Coyhaique.

Aysén. 8-9-I1-90. Trampas Coll..; 1 Paratipo ma-

cho: 1 ejemplar (gen. prep) Río Blanco. Malleco.

Col. L.E. Peña. 3-51, depositados en el MZUC; 1

Paratipo (gen. prep.). Río Blanco. Malleco. Col.

L.E.Peña, depositado en el IML Tucumán. Ar-

gentina.

ETIMOLOGIA: el nombre específico de esta es-

pecie se basa en la estuctura en forma de diente

que presenta el clásper en la genitalia del macho.

OBSERVACIONES: esta especie se parece a S.

simillima (Koehler) pero difiere en el salpicado

rojizo de las alas anteriores que presenta ésta; la

genitalia del macho presenta una dentadura en el

clásper.

Scania perlucida (Koehler) n. comb.

(Figs. 6,16,31 y 41)

Pseudoleucania perlucida (Koehler). Koeh-

“Faz interior blanco amarillenta, pilosa, pa-

tas del mismo color mezclado con pardo y las de-

lanteras con largos pelos sobre una base de

escamas casi blancas, palpos, frente y tégula y tó-

rax ocre pálido con tinte rosado, palpos con lar-

gos pelos frontales, ocre rosados, mezclados con

algunos pardos oscuros, la punta dirigida hacia

arriba, pequeña con escamas casi blancas, tégulas

con banda negruzca, base del abdomen con lar-

gos pelos blancos” (Koehler,1967).

Macho (Fig. 6): “de color oro viejo, rosado,

hacia afuera algo oscurecido, nervaduras media-

nas, cubitales y anales casi blancas, intersticios

debajo de la célula en el campo externo con rayas

negruzcas, finas; claviforme, orbicular y renifor-

me intensamente negras, la claviforme con una

raya larga, la orbicular con raya negra desde la

raíz, la reniforme redonda, marcas marginales ex-

ternas, negras, franjas de color básico del ala, con

línea media oscura, cortada por las líneas negruz-

cas de las nervaduras.

Alas posteriores blancas, translúcidas, iri-

descentes con las franjas blancas (op. cit..)

EprrIsIs (Fig. 31): largo de la epífisis 3.8 ve-

ces el ancho máximo de ésta; collum grueso, 3.5

veces el ancho máximo de la epífisis; ápice del

collum truncado; floccus 3.5 veces el ancho má-

ximo de la epífisis; sensilas presentes en el cor-

pus y en el labellum.

EXPANSION ALAR: X= 31 mm

EXPANSION ALAr: 32 mm (op. cit.).

Hasrrar: Ñorquinco, Río Negro (op.cit.).

GENITALIA (Fig. 16): “valva algo alargada,

fuera de lo normal en el género, harpe con la

punta espatulada, ancha y la yuxta con un fuerte

proceso digitiforme” (op.cit).

Corona débil con 8 cerdas, saccus romo,

clásper aviforme, yuxta con una prolongación es-

piniforme, “cuello hadenino” medial, aedeagus

con tres espinas simples.

MATERIAL EXAMINADO: 32 ejemplares: 1 ma-

cho Holotipo. prep. 1148). Argentina. Ñorquinco

(Prov. Río Negro). 16-11-1961. Colección Inst.

Fund. Miguel Lillo (4000) S.M. Tucumán. Tucu-

mán. Argentina. Ex. Colección P. Koehler. 31

machos: Pto Natales, Feb. 1953. Alarcón Coll.: 9

machos: Pto Natales. Magallanes. Chile. 23 fe-

brero 1991. Trampas Coll.

OBSERVACIONES: Primer registro para Chile.

Gayana Zool. 58(1), 1994

Scania perornata (Koehler) n. comb.

(Figs. 7,17,32 y 42

)

Paranicla perornata (Koehler) Koehler,

90597

Pseudoleucania perornata (Koehler) Koeh-

les tL9607I515:

Tipo: 1 Paratipo depositado en el Instituto y

Fundación Miguel Lillo (no visto).

Macho (Fig. 7): “Tórax, cabeza, palpos de

gris plateado mezclado de pardo, el medio de la

doble cresta toracal con oscura línea central, té-

gulas bordeadas de pardo oscuro y con una banda

inferior, gruesa, de pardo oscura, arriba de pardo

más claro, bordeado en ambos lados, arriba y

abajo, de gris plateado, frente más oscura, palpos

fuera negruzcos, al borde del segundo artejo de

gris plateado, el tercero de pardo amarillento, pa-

tas salpicadas de pardo, abdomen más claro, pin-

cel anal de ocre algo rojizo. Ala Anterior: color

de fondo pardo, sin fajas transversales y en su lu-

gar puntos negros, dobles en la costa, nervaduras

casi negras bordeadas de gris plateado, célula

más oscura que el fondo, claviforme negruzca

hasta la raíz, gruesa, orbicular puntiforme, puntos

marginales negros que entre la mediana se alargan

hacia la De sin alcanzarla, franjas de color pardo

más tirando al ocre. Ala Posterior: blanca, translú-

cida y algo ahumada sobre la nervadura y la cos-

ta, puntos marginales pardos, franjas blancas

hacia la costa ahumadas. Faz inferior en el ala

anterior sin marcas de los puntos costales, pero

con puntos discoidales y marginales en ambas

alas” (Koehler, 1959).

Eprrisis (Fig. 32: largo de la epífisis 3.7 ve-

ces el ancho máximo de ésta; floccus 3.1 veces el

ancho máximo de la epífisis; collum engrosado,

1.6 veces el ancho máximo de la epífisis.

EXPANSION ALAR: X=28.3 mm

ENVERGADURA ALAR: “ 29-32 mm” (op. cit.).

PATRIA: “Bariloche, Neuquén, Piedra del

Aguila, Neuquén, Chapelco, Neuquén” (op.cit.).

“La especie se diferencia por sus dos mácu-

las puntiformes de la P. gaudens que posee una

sola: la orbicular ” (op. cit.).

GENITALIA (Fig. 17): uncus grueso terminado

en púas; cucullus con tres setas dispersas; corona

débil con 16 cerdas; saccus redondeado; corte de

la valva y gran parte del cucullus se presenta co-

rrugada; yuxta cordiforme; aedeagus presenta 2

espinas simples.

HEMBRA: similar al macho.

GENITALIA: apófisis anteriores de igual largo

que las posteriores; sterigma y ductus bursae

fuertemente quitinizado; corpus bursae globoso,

signum presente, redondeados, en número de dos

ubicados Opuestamente; cervix bursae subrecto.

MATERIAL EXAMINADO: 10 ejemplares: 2 ej:

Villa Sta. Julia Km 25 C. Bulnes. 2 marzo 1971.

Trampas Coll.; 3 ej: Villa Sta. Julia Km 25. Bul-

nes. 1 marzo. 1971. Trampas Coll.; 2 ej: Villa

Sta. Julia. Km 25. C. Bulnes. 10 marzo. 1971.

Trampas Coll.; 1 ej: Villa Sta. Julia. Km 25. C.

Bulnes. 24 marzo. 1971. Trampas Coll.; 1 ej:

Concepción 14-II1I-60 Trampas Coll.; 1 ej: Con-

cepción 29-III-61. Trampas Coll.

OBSERVACIONES: Primer registro para Chile.

Scania simillima (Koehler) n. comb.

(Figs. 8,18,24,33 y 43)

Paranicla simillina Koehler, 1959.

Pseudoleucania simillima (Koehler) Koeh-

ler, 1967. (simillina ex errore)

Tipo: 1 Paratipo depositado en el Instituto y

Fundación Miguel Lillo (no visto)

Macho (Fig. 8): “Color general pardo de la

cabeza, tórax, patágias y patas;las patágias con

gruesas bandas de pardo muy oscuro, palpos fue-

ra negruzcos; tégulas finante bordeadas de pardo

oscuro; abdomen más claro y agrisado. Ala ante-

rior sin fajas transversales, de color pardo general

rayado por las nervaduras más oscuras; nervadu-

ras pericelulares resaltan por su color blanco;

banda negra desde la base hasta la claviforme;

otra dentro de la célula apoyada sobre la M; orbi-

cular y reniforme puntos negros fuera del campo

negruzco; nervadura vecina de la costa blanquea-

da; antes del ápice algunos puntos negros costa-

les; un triángulo oscuro subapical desde el borde

está formado por rayas oscuras internervales;

puntos negros marginales; línea basal de las fran-

jas concolores más clara. Ala posterior blanca,

sedosa, irisante y levemente ahumada sobre la

nervadura y la costa; franjas ahumadas sobre una

línea basal oscura. Faz inferior sobre el disco os-

curecido y en el ala posterior en la costa salpica-

da de negro” (Koehler, 1959).

Eprrisis (Fig. 33): largo de la epífisis 5.5 ve-

ces el ancho máximo de ésta; floccus 2.8 veces el

ancho máximo de la epífisis; collum grueso; cor-

pus con sensilas tricoídeas y labellum con sensi-

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

las stiloconicas.

EXPANSION ALAR: X= 34 mm.

ENVERGADURA: “* 33-35 mm” (op. cit.).

GENITALIA (Fig. 18): “el harpe muy curvado

con su base gruesa termina en punta; el pequeño

dígitus es específico” (op. cit.).

Corona débil, uncus con cuatro púas, saccus

agudo, yuxta cordiforme, aedeagus con 5 espinas

simples y una de base bulbosa.

Patria: “Isla Victoria, Neuquén (Havrilen-

ko): San Martín de los Andes, Neuquén, Barilo-

che, Neuquén Pucará, Neuquén” (op. cit).

HEMBRA: similar al macho.

GENITALIA (Fig. 24): apófisis posteriores el

doble del largo de las anteriores; ductus bursae y

sterigma fuertemente quitinizado; corpus bursae

subgloboso, cervix bursae subrecto; corpus bur-

sae y cervix bursae subiguales en longitud; sig-

num presente, subovalado con microespinas en

su interior.

MATERIAL EXAMINADO: 3 ejemplares: macho

(gen. prep.) 25 Km South. Cochrane. Aysén. 1-3-

II-90. Trampas Coll.; macho (gen. prep.) Río Ba-

ker. 150 m Aysén. 30-31-1-1990. ; 1 ejemplar

(gen. prep.) Tranquilo. (South Murta) 6-7-I1-90.

Aysén.

OBSERVACIONES: Primer registro para Chile.

Scania strigigrapha (Hampson) n. comb.

(Figs. 9,19,25,34 y 44)

Eycophotia strigigrapha Hampson. 1905: 451.

Lycophotia strigigrapha (Hampson). Draudt

en Seiz. 1924:68

Eycophotia strigigrapha (Hampson). Koeh-

ler, 1945 : 128.

Paranicla strigigrapha (Hampson). Koeh-

lERMIOSO=11S:

Pseudoleucania strigigrapha (Hampson).

Koehler, 1967: 318.

Macho (Fig. 9): “Cabeza y tórax castaño Os-

curo salpicado con plomo, abdomen plomo, dor-

salmente teñido con fusco, ventralmente irrorado

con castaño. Alas anteriores castaño plomizas,

salpicado con castaño, las venas oscuras, defini-

das por líneas plomas, una línea negra en el do-

blez submediano desde la base al termen, más

fuertemente cerca de la base, una línea negra.en

la parte más baja de la celda hasta desde antes de

la mitad, la orbicular pequeña, redonda con cen-

tro negro y anillo plomo no definido por encima,

reniforme una pequeña mancha negra muy distin-

guiblemente definida por plomo; líneas castaño

negruzcas en el interespacio fuera de la celda, al-

gunos puntos pálidos en la costa cerca del ápice,

una serie de puntos terminales negros claros.

Alas posteriores blancas, la costa y termen teñido

con castaño más fuertemente en la hembra, el la-

do de abajo con el área costal irrorada con casta-

ño, un punto discoidal y algunos puntos en el

termen” (trad: Hampson,1905).

EprrisIs (Fig. 34): largo de la epífisis 3.3 ve-

ces el ancho máximo de ésta; collum delgado,

terminado en punta aguzada, 5.4 veces el ancho

máximo de la epífisis, floccus 3.8 veces el ancho

máximo de la epífisis, sensilas presentes.

EXPANSION ALAR: X= 36 mm

GENITALIA (Fig. 19): “Uncus fuertemente do-

blado en su origen, después recto y estrechándose

con punta obtusa, armada de dos pares de uñas;

tegumento ancho con prominencia inferior en án-

gulo recto; valva con el borde superior bisinuado,

el inferior sinuado y rugoso, borde externo curva-

do e inclinado con peine fuerte y recto; la parte

interna de la valva más ancha que la externa; har-

pe ancho tan largo como el ancho de la valva,

muy curvado, puntiagudo y en su interior algo

rugoso; yuxta en forma de doble placa, curvada

en su extremidad; aedeagus con cinco espinas

fuertes y cortas, su largo es la mitad del ancho

del pene; una de ellas sobre una placa basal alar-

gada” (Koehler, 1945).

Uncus grueso terminado en cuatro púas ;

yuxta cordiforme con un proceso levantado quiti-

nizado en el centro, cucullus en el borde costal

con cuatro setas dispersas a lo largo de ésta; clás-

per aviforme, en la parte dorsal de éste presenta

un excavado con irregularidades y una prominen-

cia abultada al final de ésta; debajo de éste se

presenta un dígitus; saccus alargado: aedeagus

con seis espinas en el cornuti, una de ellas de ba-

se prominentemente bulbosa.

HEMBRA: alas anteriores castaño-claras, en la

celda discal y en la parte dorsal de ésta presenta

una mancha alargada con escamas castaño-oscu-

ras que se ve interrumpida por la mancha orbicu-

lar castaño-clara, luego continúa la mancha

castaño-oscura, reniforme notoriamente marcada

con escamas castaño-oscuras, patagias, tégulas y

patas castaño-claras con algunas escamas casta-

ño-oscuras. Alas posteriores castaño-blanquizcas

con algunas escamas castaño-claras.

GENITALIA (Fig. 25): apófisis posteriores subi-

gual en tamaño que las apófisis anteriores, cervix

Gayana Zool. 58(1), 1994

y corpus bursae subigual en tamaño, corpus bur-

sae con un signum redondeado, ostium bursae

muy quitinizado.

HABITAT: “Andes Patagónicos, Valle del lago

Blanco, Comodoro Rivadavia (Chubut)” (op. cit.).

MATERIAL EXAMINADO: 3 ejemplares: Fototi-

po macho. Hampson Lycophotia strigigrapha.

Patagonia. Chubut, Andes. Valle del lago Blanco.

1904. Syntype. 1 hembra (gen. prep.) Juntos del

Toro. Marzo 93. Elqui. Col. J.G.G. ; 1 macho

(gen. prep.) Curacautín. Malleco. L. E. Peña. HI-

51. ; 1 hembra (gen. prep.) Curacautín. Malleco.

L.E. Peña. MMI-51 ; 1 hembra Termas de Río Blan-

co. Cautín. 11-57.

OBSERVACIONES: Primer registro para Chile.

Scania tephra (Koehler) n. comb.

(Figs. 10,20 y 45)

Euxoa tephra Koehler. 1945: 84.

Paranicla tephra (Koehler) Koehler, 1959: 112.

Pseudoleucania tephra (Koehler) Koehler,

ITESO

HEMBRA: “Cabeza, tórax, palpos, patagia, té-

gula y patas grises, abdomen más blanquecino.

Alas anteriores del mismo color gris de topo, una

mácula esfumada, negra, basal, bajo la mediana,

claviforme indicada por la terminación de la

sombra negra, submediana, orbicular muy alarga-

da, reniforme pequeña y difusa, ambas con an-

chos contornos negros, subterminal definidas por

triángulos negros, alargados y puntos terminales

negros. Los triángulos más destacados en las me-

dianas y en la cubitalis y la analis, toda el ala f1-

namente punteada de negro, franjas en su

extremidad blancas.

Ala posterior blanca sedosa, sobre las nerva-

duras, ahumadas lo mismo que el ápice” (Koeh-

ler, 1945).

EXPANSION ALAR: “26- 29 mm” (op. cit.).

HabrrTar: * San Luis, Daguerre” (op.cit.).

Macho (Fig. 10 ): “Tórax y frente amari-

llento verdoso, con un tinte más claro y en medio

con una delgada faja verdinegra, palpos, patas

del color del tórax, como también todas las partes

cubiertas de largo pelaje, abdomen más claro y

no verdoso, pincel anal amarillento. Ala anterior:

de color básico, de crema salpicado de verdine-

gro queda toda la costa de color cremoso y las

nervaduras, menos la mediana y la cubital, deba-

jo de la célula, que llevan cada una una línea

muy blanca, célula hasta el margen posterior en-

negrecida, claviforme marcada de verdinegro, or-

bicular una mancha cremosa alargada desde el

fondo negro, con rayas negras, tocando la reni- -

forme, que es oblonga y de color casi cremoso,

los puntos costales indican las inexistentes fajas

transversales, en posición postmediana una serie

de flechas negras internervales; puntos margina-

les negros; franjas concolores con raya basal co-

lor crema” (Koehler,1959).

GENITALIA (Fig. 20): clásper con crenulado

irregular en la parte superior; presencia de corona

débil con siete cerdas alargadas; uncus con cua-

tro púas; saccus agudo, yuxta con una prominen-

cia digitiforme en el centro, al evertirse el

aedeagus se dirige una porción hacia arriba con

una espina y luego bruscamente cae paralelamen-

te a través del largo de la vesica.

HasrratT: “San Luis (Los Cotypi); Bolívar;

Bs. Aires, Gral Roca, Río Negro, Neuquén, Tan-

dil, Cipolleti, Buenos Aires” (Koehler, 1959).

MATERIAL EXAMINADO: 2 ejemplares: 1 Para-

tipo macho (gen. prep.) (Pseudoleucania tephra

Koehler.) Cipolletti. Río Negro. Leg. Koehler.

Ex. Colección Koehler. Colección Instituto Fun-

dación Miguel Lillo (4000). S. M. Tucumán. Tu-

cumán. Argentina. 1 Paratipo hembra (Pseudo-

leucania tephra Koehler.) Cipolletti. Río Negro.

Leg. Koehler. Ex. Colección Koehler. Colección

Instituto Fundación Miguel Lillo (4000). S. M.

Tucumán. Tucumán. Argentina.

FILOGENIA

En 1989 Angulo y Olivares presentan el cla-

dograma de relaciones filogenéticas de los 10 gé-

neros pertenecientes a la tribu Austrandesiini

(Fig. 46), mediante el análisis de 34 caracteres.

Dichos autores concluyen que la tribu Austrande-

siini constituye un grupo monofilético caracteri-

zado por la presencia de una espina de base

bulbosa en la vésica como su autapomorfía.

Un análisis detallado de las características

morfológicas de estos géneros permitió determi-

nar que Tamseuxoa es un sinónimo junior de Eu-

xoamorpha (Angulo, 1987), que el género

Caphornia es un sinónimo junior de Paraeuxoa

(Angulo, 1990) y que Richia carnea pertenece al

género Janaesia Angulo (Angulo, 1993).

En los estudios realizados en este trabajo,

basados en los caracteres utilizados por Angulo y

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

Olivares (1989), se determina que el género Sca-

nia n. gen. debe ser incluído en la tribu Austran-

desiimi, por lo que en la Fig. 46 se entrega el

cladograma de relaciones de parentesco de los 10

géneros de esta tribu, incluyendo el nuevo género

Scania n. gen.

POLARIZACION DE LOS CARACTERES:

Para la polarización de los caracteres se usó

otros géneros de la Familia Noctuidae: Forbes

(1933) considera a Peridroma Huebner y Copi-

tarsia Hampson como géneros que retuvieron el

mayor número de estados de caracteres ancestra-

les dentro de los nóctuidos; de ellos se eligió a

las especies Peridroma saucia Huebner y Copi-

tarsia turbata Herrich- Schaeffer.

La justificación de la polarización de los ca-

racteres del género Scania n. gen y sus especies

corresponde al que sigue:

1. Pinceles odoríferos: en los machos de Pe-

ridroma Hibner, la presencia de ellos, en el ab-

domen, es corriente, sin embargo no lo es para el

resto de los Agrotinae, más bien es una retención

de caracteres antiguos, luego su ausencia es una

apomorfía.

2 y 3. Forma del clásper (“cabeza de pája-

ro”): cualquier modificación que aumente la

complejidad de la estructura es una novedad evo-

lutiva (Angulo et al., 1987), de tal manera que la

presencia de denticiones en el clásper correspon-

de a una apomorfía. Ahora si el clásper se pre-

senta en forma achatada hay una reducción de la

complejidad de la estructura por lo que corres-

ponde a una plesiomorfía.

4. Alas anteriores (color): al establecer las

comparaciones con los grupos externos se evi-

dencia una serie de transformaciones del carácter

desde “ grises blanquizcas” a “ castañas” y luego

a negro azuladas”, como en el color de fondo de

las especies analizadas, la tendencia al oscureci-

miento del color es una apomorfía.

5. Signum: ésta es una estructura que va ubi-

cada en el corpus bursae y su presencia, si bien,

es generalizada en los grupos externos, el criterio

auxiliar de “comunalidad” nos dice que la presen-

cia de signum es una condición apomórfica.

6. “cuello hadenino”: la presencia de un es-

trechamiento en el tercio distal, le da a la valva el

característico “cuello hadenino”; al presentar Pe-

ridroma un cuello hadenino, es necesario utilizar

otro grupo externo Copitarsia, que también pre-

senta cuello hadenino, con el cual se determina

que este carácter es una plesiomorfía.

7. Espinas de la corona: la presencia de es-

pinas en la corona de la valva, es un indicio de

una cópula asegurada por la acción de estructuras

que retienen el ápice abdominal de la hembra; se-

gún la comparación con el grupo externo, el cual

posee espinas fuertes, la presencia de ellas es una

condición plesiomórfica.

8. Número de espinas del cornuti: la serie de

transformaciones desde una placa basal dentada

hasta un cornuti compuesto de seis espinas o me-

nos queda aclarada con la comparación del grupo

externo, ya que éste presenta la placa antes men-

cionada, por lo tanto la presencia de espinas es

una condición apomórfica.

9. “aceitera”: la vesica se va armando para

asegurar de mejor forma la cópula, de tal manera

que crea una espina de base bulbosa que le da ma-

yor firmeza, constituyendo ésta una apomorfía.

10. Dígitus: existe una tendencia a través del

tiempo en el cual aumenta la complejidad de las

estructuras de la genitalia, pero existen casos en

las que hay reversión de estados de caracteres y

las estructuras se reducen o desaparecen, esto

ocurre con el dígitus.

11. Largo de la epífisis: las antenas de los

nóctuidos comienzan muy simples, desde ciliadas

simples hasta estructuras muy complejas como

bipectinadas o aserradas, de esta manera la epífi-

sis que cumple la función del limpiado de ésta,

debe estar estructurada desde muy resistente a lo

más débil, por lo tanto la presencia de una epífi-

sis resistente (largo epífisis menos de cuatro ve-

ces el ancho) es una apomorfía.

12. Forma de la yuxta: la fultura ventral que

sostiene al aedeagus presenta una tendencia a la

complejidad lo que se traduce en una apomorfía.

13. Prolongación yuxta: la yuxta digitiforme

está presente en el grupo externo, luego su condi-

ción es plesiomórfica y la cordiforme es una con-

dición apomórtica.

14. Forma de la prolongación de la yuxta:

de acuerdo al argumento del carácter 12, la au-

sencia de prolongación es una plesiomorfía y la

presencia es apomórfica.

15. Número de cerdas en el cucullus: como

en ambos grupos externos presentan gran canti-

dad de cerdas (más de 10) es una plesiomorfía y

un número menos de 10 es una apomorfía.

16. Saccus: el ápice de esta estructura es

agudo en ambos grupos externos, luego es un es-

Gayana Zool. 58(1), 1994

tado plesiomórfico y el ápice redondeado es apo-

moórfico.

17. Anellus: este anellus comienza inerme,

luego adquiere espinas para asegurar así la cópu-

la, siendo ésta una condición apomórfica. ;

18. Largo del floccus: Al igual que el carác-

ter 11, la presencia de floccus que presentan una

longitud de 4 o más veces su ancho corresponde

a una plesiomorfía y la simplicidad de esta es-

tructura, es una apomorfía.

19 y 20. Crenulado del clásper: el clásper es

“una estructura simplificada que se hace más com-

pleja para asegurar la cópula, la presencia del

crenulado es una caracteristica compleja adquiri-

da posteriormente, por lo tanto es una condición

apomórfica.

21. Largo espinas corona: al igual que el ca-

rácter número 15, al presentar una corona con las

cerdas más largas que el tercio del cucullus co-

rresponde a una plesiomorfía presentándola am-

bos grupos externos, y la simplicidad de ésta

corresponde a una apomorfía, asegurando la có-

pula con la aparición de la “aceitera”.

22. Uncus: el grupo externo presenta el un-

cus normal por lo que cualquier condición que se

aleje de este esquema, como ser bífido o trífido,

es una novedad evolutiva (Angulo et al., 1987)

de igual forma si el uncus presenta un engloba-

miento en su tercio medial, esto para asegurar la

cópula, corresponde a una apomorfía.

23. Alas posteriores con tinte rojizo: aquí al

igual que las alas anteriores hay una serie de

transformaciones que va de “grises castañas” a

“castañas” y finalmente a “castañas blanquizcas”,

la tendencia apomórfica es al blanquizco, ya que

éstas se esconden bajo las alas anteriores en repo-

so y su color no las delata.

24. Tipo de clásper: mientras más compleja

la genitalia, mayor es su condición apomórfica,

por lo que la presencia de dientes en el clásper es

una apomorfía.

25. Desarrollo de la yuxta: desde una forma

más simple, que corresponde a la digitiforme pre-

sentada en el grupo externo hasta el estado cordi-

forme de las especies analizadas, ésta última

corresponde a una apomorfía.

26. Tamaño “aceitera”: mientras mayor sea el

tamaño de la espina de base bulbosa, mayor es la

apomorfía de este carácter. Justificado en carácter 9.

27. Presencia de prominencia dorsal en el

clásper: se justifica de igual forma que la com-

plejidad de las estructuras, igual que carácter 24.

28. Alas anteriores (color): al igual que el

carácter 4, las alas van desde la ausencia de los

pigmentos hasta una posesión de pigmentos os-

curos y más aún de colores, como es el caso de la

especie S. simillima (Koehler) que presenta en las

alas anteriores un tinte rojizo, siendo éste un es-

tado de caracter apomórfico.

29. Yuxta cordiforme terminada en punta:

de igual manera que la forma de la yuxta, se jus-

tifica igualmente, por lo tanto la presencia de una

yuxta cordiforme en punta es una apomorfía.

Desde una yuxta digitiforme hasta una yuxta cor-

diforme con terminación en punta.

30. Crenulado en el tercio medial: el crenu-

lado corresponde a una armadura y cualquier ad-

quisición a nivel de la genitalia del macho es una

apomorfía.

31. Forma de la reniforme: la forma de la

mancha se presenta en forma de riñón, la forma

redondeada es una adquisión por lo tanto consti-

tuye una novedad, siendo éste estado de carácter

una apomorfía.

32. Corpus bursae v/s Cervix bursae: los

grupos externos presentan un corpus bursae y

cervix bursae globosos y subiguales en ancho, en

cambio la disminución del ancho en el cervix con

respecto al corpus es una condición apomórfica.

El resto de los caracteres corresponden a la

entregada por Angulo et al. (1987) incluidos en

el cladograma de los géneros de la tribu Austran-

desiini.

El cladograma de la Fig. 46 muestra al gé-

nero Scania n.gen incluído en el cladograma de

la tribu Austrandesiini Angulo y Olivares (1989).

Dicho árbol presenta los cambios taxonómicos

ocurridos a la fecha, por ejemplo, Caphornia si-

nónimo junior de Paraeuxoa Forbes (Angulo,

1990), además de la inclusión de los géneros Ja-

naesia Angulo (Angulo, 1993) y de Scania n.

gen. El nuevo género presenta “cabeza de pájaro”

como autapomorfía, quedando como género her-

mano de Pseudoleucania Staudinger. El indice

de consistencia se mantiene con respecto al cla--

dograma de Angulo y Olivares (1989) al igual

que los eventos vicariantes (sensu Angulo, 1993)

y sólo difiere en la longitud del árbol.

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

Lista de los caracteres y sus correspondientes estados plesiomórficos o apomórficos:

CARACTER

1 Pinceles Odorífero

2 Forma clásper

3 Forma “cabeza pájaro”

4 Alas anteriores

S N* de signa

6 “ cuello hadenino”

7 Espinas corona

8 N” espinas del cornuti

9 “aceitera”

10 Diígitus

11 Largo epífisis

12 Forma yuxta

13 Prolongación yuxtal

14 Forma prolongación

15 N* cerdas cucullus

16 Forma del saccus

17 Anellus

18 Largo floccus

19 Crenulado clásper

20 Tipo crenulado

21 Largo espinas corona

22 Uncus

23 Color alas posteriores

24 Clásper

25 Desarrollo yuxta

26 Tamaño “aceitera”

27 Clásper con una prominencia

en la “cabeza pajaro”

28 Alas anteriores con tinte rojizo

29 Yuxta cordiforme terminada en punta

30 Crenulado clásper en el tercio medial

31 Forma de la mancha “reniforme”

32 corpus bursae versus cervix

bursae en ancho

PLESIOMORFICO

presente

liso

achatado

con manchas

uno

definido

fuertes

1-4

ausente

presente

4 veces o más

digitiforme

ausente

espiniforme

más de 10

aguzado

liso

4 0 más

ausente

leve

más de 1/3 long

no aglobado

castaño-claras

liso

esbozo

base subigual

al largo espina

ausente

en forma de riñón

elobosos y subiguales

APOMORFICO

ausente

no liso

de otra forma

sin manchas

dos

poco definido

débiles

más de 4

presente

ausente

menos de 4 v/s ancho

cordiforme

presente

digitiforme

menos de 10

redondo

con espinas

3 o menos

presente

fuerte

menos de 1/3

aglobado

blancas

con dientes

desarrollado

base mayor

al largo espina

presente

ovalada

desiguales

Gayana Zool. 58(1), 1994

En el cladograma de la Fig. 48 de las 10 es-

pecies de Scania n. gen es posible decir:

1 El cladograma presenta una longitud del

árbol de 45 y un índice de consistencia de 0.67,

lo que indica que es una buena aproximación a

una clasificación natural. Las especies de este gé-

nero representan un grupo monofilético definido

por cinco sinapomorfías: pelos odoríferos ausen-

tes (1”), clásper aviforme (2”), dígitus ausente

(10”), yuxta cordiforme (12”) y prolongación de

la yuxta (13”).

2. Existen dos conjuntos de especies que po-

seen sus sinapomorfías correspondientes y que se

separaron tempranamente. El primer grupo com-

puesto por $. aspersa (Butler) con las alas ante-

riores con las manchas poco definidas (4”), S.

perornata (Koehler) con la presencia de dos sig-

na (5”) y S. messia (Guenée) con una prominen-

cia en el clásper (27”) presentando todos estas

especies la sinapomorfía, ancho corpus bursae

v/s cervix bursae (32”).

El otro grupo más abundante, de siete espe-

cies, presenta tres sinapomorfías: espinas en la

corona débiles (“7”), número de cerdas en el cucu-

llus menor a diez (15”) y el largo de las espinas

del cucullus es menos de 1/3 de éste (21”), este

grupo está conformado por S. perlucida (Koeh-

ler), con la mancha reniforme ovalada (31”),

S.tephra (Koehler) con la prolongación de la

yuxta digitiforme (14”), S. odontoclasper n. sp.

definida por la presencia de dientes en el clásper

(24”) y S. anelluspinata n. sp., presenta el anellus

con espinas (17”), S. strigigrapha (Hampson), su

autapomorfía es la espina de base bulbosa subi-

gual al largo de la espina (26”), S. simillima

(Koehler) la presencia de un tinte rojizo entre las

venas de las alas anteriores (28”) y finalmente S.

neuquensis (Koehler) con la yuxta cordiforme

terminada en punta (29”).

Las especies S. odontoclasper n. sp. y S.

anelluspinata n. sp. son especies hermanas de

muy reciente separación, especialmente en su

primera fase, es decir evidente especiación geo-

gráfica; S. odontoclasper n. sp (Chile) y anellus-

pinata n. sp (Argentina).

Las especies 5S. strigigrapha (Hampson) y

S. neuquensis (Koehler) son especies hermanas

también de muy reciente separación, pero al pa-

recer en una evidente simpatría secundaria.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

El “grupo messium” (Angulo y Olivares,

1992) reúne a siete especies de lepidópteros nóc-

tuidos: aspersa (Butler), bridarolliana (Koehler),

ferruginescens (Blanchard), messium (Guenée),

strigigrapha Hampson, tephra Koehler y witt-

meri Koehler.

La especie P. ferruginescens (Blanchard) es

una especie válida perteneciente al * grupo ¡gni-

cola** del género Pseudoleucania Staudinger. Su

inclusión en el “grupo messium” (Angulo y Oli-

vares, 1992) se debe a un error de identificación,

correspondiendo S. messia (Blanchard) ya que P.

ferruginescens presenta un clásper alargado con

su extremo curvado.

Con respecto a la especie Agrotis wittmeri

Koehler, no debe ser incluida en el género Scania

por presentar el clásper dirigido a la región ven-

tral de la genitalia y no presentar la estructura tí-

pica de Scania n. gen que es la forma de “cabeza

de pájaro” en el clásper, quedando por lo tanto

en incertae sedis.

Mediante el análisis de caracteres de macu-

lación alar, genitalias de los machos y de las

hembras y del uso de caracteres de la epífisis po-

dial, se agregaron las especies P. neuquensis

(Koehler). P. perlucida (Koehler), P. perornata

(Koehler) y P. simillina (Koehler). Se propone

que las siguientes especies conformen el nuevo

género Scania:

Scania anelluspinata n. sp.

Scania aspersa (Butler) n. comb.

Scania messia (Guenée) n. comb.

Scania neuquensis (Koehler) n. comb.

Scania odontoclasper n.sp.

Scania perlucida (Koehler) n.comb.

Scania perornata (Koehler) n.comb.

Scania simillima (Koehler) n. comb.

Scania strigigrapha (Hampson) n.comb.

Scania tephra (Koehler) n. comb.

Entre los ejemplares inicialmente determi-

nados como S. neuquensis (Koehler) se encontró

que realmente pertenecían a tres especies: $. neu-

quensis (Koehler), S. anelluspinata n. sp. y $.

odontoclasper n. sp., debido a que en las especies

de la región andino-patagónica existe un homo-

cromismo con el sustrato y una notoria criptici-

dad entre ellas, lo que condujo al error de

identificación indicado más arriba.

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

Pseudoleucania bridarolliana Koehler

(1959) constituye un sinónimo junior de Spodop-

tera aspersa Butler (1882), ya que tras la revi-

sión del Fototipo de Spodoptera aspersa Butler y

el Paratipo del Instituto y Fundación Miguel lillo,

los preparados de genitalia y la descripción origi-

nal de Koehler, 1959, se determina que corres-

ponde a la misma especie, diferenciándose sólo

en que el número de espinas del cornuti es de dos

en aspersa (Butler.) y de tres en bridarolliana

(Koehler), lo que en estas especies del género

Scania n. gen. y de géneros próximos es muy va-

riable y de poca confiabilidad.

Koehler en 1967 establece la sinonimia de

Paranicla Koehler, 1959 con Pseudoleucania

Staudinger, 1899, sobre la base de que Paranicla

grisalba Koehler,1959 era sinónimo de Pseudo-

leucania ignicola Staudinger, 1899; sin embargo

esto no es correcto, debido a que sólo se estable-

ce que la especie grisalba es sinónimo de la es-

pecie ignicola y nada más; diferente sería si la

especie grisalba hubiera sido la especie tipo de

Paranicla lo cual no lo es.

La especie tipo de Paranicla Koehler es

Agrotis pesronii es sinónimo de la especie Pseu-

doleucania ferruginescens (Blanchard), por lo

tanto el género Paranicla queda invalidado; en

consecuencia de las 30 especies colocadas por

Koehler (1959) en el género Paranicla, 1 perte-

nece a Janaesia Angulo, 7 corresponden a Scania

n. gen, 17 corresponden a Pseudoleucania Stau-

dinger y las 5 especies restantes quedan en incer-

tae sedis hasta que se haga una revisión de ellas.

De tal forma que dicho género necesita una revi-

sión posterior para ubicarle y para regularizar su

situación taxonómica.

El género Scania n. gen. es próximo a Pseu-

doleucania Staudinger por presentar el uncus con

cuatro púas, valvas con un “cuello hadenino”,

cornuti con espinas simples, ausencia de dígitus

en algunas especies, Órgano timpánico similar y

en algunos casos espina de base bulbosa, pero di-

fiere de Pseudoleucania Staudinger, en la presen-

cia de un clásper aviforme, característica de este

género, la epífisis podial se presenta de tamaño

menor, menos de cuatro veces su ancho máximo,

existiendo diferencias de tamaño, desde 3.5 a 4.0

mm para Pseudoleucania y de 2.3 a 3.4 mm para

Scania n. gen, teniendo presente que en algunos

casos pueda ser menor el tamaño debido a las

condiciones de alimentacion, humedad u otros.

El género Scania n. gen. se distribuye ente-

ramente en el cono sur de Sudamérica (especial-

mente en la región Andino-Patagónica

correspondiente).

Las especies S. neuquensis (Koehler), S.

perlucida (Koehler), S. perornata (Koehler) $. si-

millima (Koehler) y S. strigigrapha (Hampson)

constituyen nuevos registros para Chile.

Con respecto a la distribución geográfica de

las especies de Scania n. gen. se puede generali-

zar lo siguiente:

- Vertiente occidental de la Cordillera de los An-

des sureña desde Concepción. Chile (36* 50”S,

73% 03"W) hasta Rio Bandurrias. Chile (50?

44”S, 72% 25"W).

S. odontoclasper n. sp.

S. perornata (Koehler)

- Vertiente oriental de la Cordillera de los Andes

sureña desde San Luis. Daguerre. Argentina.

(33 01'S, 65” 03"W) hasta Pto. Natales 51%

44”S, 72* 31"W)

S. anelluspinata n. sp.

S. perlucida (Koehler)

S. tephra (Koehler)

- Patagonia o Cono Sur de Sudamérica.

S. aspersa (Butler)

S. messia (Guenée)

- Patagonia austral al sur del paralelo 43*

S. neuquensis (Koehler)

S. simillima (Koehler)

S. strigigrapha (Hampson)

Este patrón de distribución es un reflejo de

la historia del género en esta área, tal como espe-

ciaciones alopátricas en diferentes fases de sepa-

ración y también de simpatría secundaria, lo que

se explica en los cladogramas de relaciones filo-

genéticas entre los géneros próximos a Scania n.

gen y las especies de este género.

Al incluir (Fig. 46) el nuevo género Scania

dentro de la tribu Austrandesiini Angulo y Oliva-

res, 1989, ya que también presenta la espina de

base bulbosa (“aceitera”), se ubica en el árbol de

relaciones de parentesco próximo a Pseudoleuca-

nia Staudinger (Fig. 46), siendo éste su género

hermano; cerca de él también se encuentra el gé-

nero Janaesia Angulo, habiendo sido incluídos

ambos géneros, en alguna oportunidad, en Pseu-

doleucania Staudinger o en Paranicla Koehler.

Gayana Zool. 58(1), 1994

Este árbol mantiene el índice de consisten-

cia de 0.59, al igual que el propuesto por Angulo

y Olivares (1989), pero la longitud del árbol es

mayor debido a que multiplicaron los nodos por

el aumento del número de géneros ya que se in-

cluye a Scania n. gen., Janaesia Angulo y Pseu-

doleucania Staudinger (s.s.).

Las agrupaciones que aparecen en el árbol

de los géneros concuerdan con la historia evoluti-

va propuesta por Angulo (1993) *...como un I

evento vicariante (lev) debido a la aparición de

los mares epicontinentales, por el cual se separan

las tribus Austrandesiini Angulo y Olivares

(1989) y Boursinidiini Angulo (1990) quedando

la Patagonia occidental y la oriental, posterior-

mente la patagonia fue empujada por la placa de

Nazca al tiempo que también era empujada por el

“rift” del protoatlántico (II ev) y el III y IV even-

to vicariante corresponden al período de glacia-

ciones”.

En cuanto a las relaciones filogenéticas en-

tregadas por el árbol de las especies del género

Scania n. gen. (Fig. 48) podemos decir:

El árbol obtenido con las especies del géne-

ro Scania n. gen. presenta una longitud de 43 y

un índice de consistencia de 0.65, lo que indica

que es una buena aproximación a una clasifica-

ción natural.

Este género es monofilético y presenta las

siguientes sinapomorfías: clásper aviforme (2”),

dígitus ausente (9”), largo de la epífisis menos de

cuatro veces su ancho (11”), yuxta con una pro-

minencia (13”).

En el cladograma se presentan dos grupos

bien definidos:

El primer grupo que incluye a S. aspersa

(Butler), S. perornata (Koehler) y S. messia

(Guenée) presentando la sinapomorfía yuxta de-

sarrollada (25”).

El segundo grupo, más abundante, incluye a

S. perlucida (Koehler), S. tephra (Koehler), S.

odontoclasper n. sp., S. anelluspinata n. sp., $.

strigigrapha, S. simillima (Koehler) y finalmente

S. neuquensis (Koehler) presentando las sinapo-

morfías espina de la corona débiles (“7”), número

de cerdas en el cucullus menor a diez (15”) y el

largo de las espinas del cucullus es menos de 1/3

de éste (21”).

Estos dos grupos fueron separados por un V

evento vicariante que corresponde a una de las

primeras glaciaciones (1.700.000 m.a- 11 mil

años)

Las especies S. odontoclasper n. sp. y S.

anelluspinata n. sp. son especies hermanas de

muy reciente separación, es decir, hay una evi-

dente especiación alopátrica en su fase inicial.

Las especies S. strigigrapha (Hampson) y S.

neuquensis (Koehler) son especies hermanas de

muy reciente separación, ya que se encuentran en

una simpatría secundaria (posterior a la especia-

ción geográfica inicial).

AGRADECIMIENTOS

Agradezco al Dr. Andrés Angulo, profesor

del Departamento de Zoología, por el patrocinio

de esta tesis de grado de Magister, también agra-

dezco la desinteresada cooperación de la Dra.

María E. Casanueva de la Universidad de

Concepción, de la Dra. Zine D' Admaj de Toledo,

Dr. Fernando Navarro y Dr. Guillermo Claps del

Instituto y Fundación Miguel Lillo, Argentina,

por el préstamo y traslado del material tipo.

Además deseo agradecer al personal del laborato-

rio de Microscopía Electrónica y al Proyecto

91.38.04-6 de la Dirección de Investigación de la

Universidad de Concepción por el apoyo econó-

mico para la realización de la tesis.

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Gayana Zool. 58(1), 1994

FiG.

1. Adulto macho Holotipo de Scania anelluspinata n. sp.

2. Adulto macho Fototipo de Scania aspersa (Butler) n. comb.

3. Adulto macho de Scania messia (Guenée) n. comb.

4. Adulto macho de Scania neuquensis (Koehler) n. comb.

5. Adulto macho Holotipo de Scania odontoclasper n. sp.

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n.gen.: OLIVARES T. S.

FIG. 6. Adulto macho de Scania perlucida (Koehler) n. comb.

FIG. 7. Adulto macho de Scania perornata (Koehler) n. comb.

FIG. 8. Adulto macho Holotipo de Scania simillima (Koehler) n. comb.

Fi. 9. Adulto macho Fototipo de Scania strigigrapha (Hampson) n. comb.

Fic. 10. Adulto macho Holotipo de Scania tephra (Koehler) n. comb.

Sil

Gayana Zool. 58(1), 1994

Fic. 11. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania anelluspinata n. sp.

Fic. 12. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania aspersa (Butler).

Fic. 13. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania messia (Guenée).

Fic, 14. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania neuquensis (Koehler).

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n.gen.: OLIVARES T. $.

Fic. 15. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania odontoclasper n. Sp.

Fi. 16. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania perlucida (Koehler).

FiG. 17. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania perornata (Koehler).

Fic. 18. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania simillima (Koehler).

leal

AAA Y)

Gayana Zool. 58(1), 1994

Fic. 19. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania strigigrapha (Hampson).

FiG. 20. Genitalia del macho y vésica insuflada de Scania tephra (Koehler).

Fic. 21. Genitalia de la hembra, bursa copulatrix de Scania anelluspinata n. sp.

Fic. 22. Genitalia de la hembra, bursa copulatrix de Scania aspersa (Butler).

FiG. 23. Genitalia de la hembra, bursa copulatrix de Scania messia (Guenée).

Fic. 24. Genitalia de la hembra, bursa copulatrix de Scania simillima (Koehler).

Fic. 25. Genitalia de la hembra, bursa copulatrix de Scania strigigrapha (Butler).

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

Fic. 26. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania anelluspinata n. sp. (100x).

Fic. 27. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania aspersa (Butler) (100x).

Fic. 28. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania messia (Guenée) (100x).

Fic. 29. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania neuquensis (Koehler) (120x).

Gayana Zool. 58(1), 1994

FiG. 30. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania odontoclasper n. sp. (100x).

FiG. 31. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania perlucida (Koehler).

FrG. 32. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania perornata (Koehler) (100x).

FrG. 33. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania simillima (Koehler) (100x).

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

FiG. 34. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Scania strigigrapha (Hampson) (115x).

FiG. 35. Microfotografía al microscopio electrónico de la epífisis podial de Peridroma saucia (Huebner) (82x).

Gayana Zool. 58(1), 1994

FiG

ElG

FiG

- 36. Distribución geográfica de Scania anelluspinata n. sp.

. 37. Distribución geográfica de Scania aspersa (Butler).

- 38. Distribución geográfica de Scania messia (Guenée).

. 39. Distribución geográfica de Scania neuquensis (Butler).

Sistemática y filogenia de las especies del género Scania n. gen.: OLIVARES T. S.

FiG. 40. Distribución geográfica de Scania odontoclasper n. sp.

FIG. 41. Distribución geográfica de Scania perlucida (Koehler).

FIG. 42. Distribución geográfica de Scania perornata (Koehler).

FlG. 43. Distribución geográfica de Scania simillima (Koehler).

FIG. 44. Distribución geográfica de Scania strigigrapha (Hampson).

FiG. 45. Distribución geográfica de Scania tephra (Koehler).

Gayana Zool. 58(1), 1994

Euxoam.

Noctubour

Pyrgeia

Janaesia

Peudoleu

Scania.

Tisagroni

Paraeuxoa

Austrand

Beriotis

arbol generos ||

Treelength: 49

C.1.: 0.59.

10 Taxa

35 Chars

DATA MATRIX: 47

Rustrand. 6181111111111 100 109000090099099909000 1

Euxoam. 8110000909 10 190 14 190600990600909900M0 1

Noctubour M181115081019190 1999099909999599999B 1

Paraauxoa 11811000181111111000000009000900000 1

Peudoleu 01000090 119008 11 100009 10009900009000 1

Tisagroni 616110011111110106 1000900909000009000 1

Pyrgeia 8 100990009000900B9BBBAABBBABBBABAAA 1

Janaesia B1890909089 1111101000090 190909080900BB0 1

Beriotis B1011108101111110900 199009900990000 1

Scania. 81010990901111110600118010111111110091

z a 2

o o — o — [= 1]

5 5 E = É z 3 = E 2

S 5 z 5 7 3 E E > 3

(a] a E a _— o [=] 1” “M o E

Treelength: 45

C.1.: 0.67

10 Taxa

32 Chars

anel luspin 1110011611111?1010101000 10000000

1,2,10"1213' DATA MATRIX:

aspersa 11810999011110610611011010000001

messia 111900090 110 1?0000070009 1010000 1

neuque 1100?11111011?100110 1000600001100

odonto 1119211011111?110607 110100099000

per luci 1108701001111011010?1100 100000 10

perornat 111010000 1110720001 1000 107000000 1

similli 1160011111011?110107? 1100000 10000

strigigra 1110?11110111710011010000 1990 108

tephra 1100?110017?1111107?111100 10000000

FiG. 46. Cladograma de los géneros de la Tribu Austrandesiini (Angulo y Olivares, 1989), agregado el género

Scania n. gen.

FiG. 47. Matriz de datos de los géneros de la Tribu Austrandesiini (Angulo y Olivares, 1989), agregado el género

Scania n. gen.

Fic. 48. Cladograma de las especies del género Scania n. gen.

F¡G. 49. Matriz de datos de las especies del género Scania n. gen.

Gayana Zool. 58(1): 61-69, 1994

ISSN 0016-531X

ACAROS ASOCIADOS A EQUINOS ESTABULADOS I. ANDROLAELAPS

CASALIS (BERLESE), HAEMOGAMASUS HORRIDUS MICHAEL Y

. PROCTOLAELAPS PYGMAEUS (MULLER), PRIMER REGISTRO PARA

CHILE Y REDESCRIPCION DE LOS MACHOS (ACARI: MESOSTIGMATA)

MITES ASSOCIATED ON HORSES STABLES [. ANDROLAELAPS CASALIS

(BERLESE), HAEMOGAMASUS HORRIDUS MICHAEL AND

PROCTOLAELAPS PYGMAEUS (MULLER), THE FIRST RECORD FOR

CHILE AND REDESCRIPTION OF THE MALE (ACARI: MESOSTIGMATA)

María E. Casanueva*, Alvaro M. Berrios*

Ariel A. Peredo* y Rodrigo I. Martínez*

RESUMEN

Se señala la presencia de Androlaelaps casalis (Berle-

se), Haemogamasus horridus Michael y Proctolaelaps

pygmaeus (Muller) como primer registro válido para el

país, asociados a equinos estabulados de la ciudad de

Concepción, VIII Región-Chile. Se entrega una redes-

cripción de los machos apoyada con esquemas origina-

les, se incluyen basinomio, sinonimia y distribución

geográfica conocida.

PALABRAS CLAVES: Equinos estabulados, Acari, Mesos-

tigmata, Nuevos registros.

INTRODUCCION

Los animales mantenidos en pesebreras pe-

queñas y mal ventiladas, alimentados esencial-

mente en base de heno o avena, con cama de paja

y en constante estabulación, constituyen organis-

mos altamente predispuestos a absorber una alta

contaminación ambiental. Estos contaminantes

* Departamento de Zoología, Universidad de

Concepción. Casilla 2407, Concepción, Chile.

ABSTRACT

The Presence of Androlaelaps casalis (Berlese),

Haemogamasus horridus Michael and Proctolaelaps

pygmaeus (Muller) as first record in Chile, associated

to stable horses in Concepción city are registred. A

description of males based with originals dessigns, in-

clude basinomy, synonimy and know geographical dis-

tribution are given.

KeyworDs: Stables Horses, Acari, Mesostigmata, New

records.

pueden ser patógenos en diversas formas ya que

pueden causar infección, ser alergenos, actuar co-

mo irritantes primarios o simplemente bloquear

los mecanismos de defensa respiratoria, de mane-

ra que aumentan la suceptibilidad del organismo

a otros patógenos (Clarke, 1987 a y b). Entre los

alergenos comúnmente involucrados en patolo-

gías figuran distintas especies de hongos (Derke-

sen, 1983; Mc Pherson £ Thompson, 1983 y

Beech, 1979) y ácaros o sus productos metabóli-

cos, los cuales constituyen un factor alergeno im-

portante, sobre todo a través de sus pellets fecales.

Debido a que los registros de ácaros como

productores de afecciones respiratorias en equi-

nos se limitan a indicar que son “ácaros”, sin de-

terminar la o las especies involucradas, es

Gayana Zool. 58(1), 1994

necesario identificar con seguridad cual es la aca-

rofauna asociada a los equinos estabulados y cua-

les son las especies que tienen capacidad

alergena.

En Chile no se han realizado estudios para

determinar las especies de ácaros que se encuen-

tran normalmente presentes en el alimento (heno

y avena), almacenado o dispuesto en los comede-

ros y, en los piso-cama de paja y/o viruta de las

pesebreras de equinos estabulados; las cuales,

probablemente, serían las especies causantes de

ciertos trastornos de tipo alérgico característicos

de los equinos.

En el presente estudio se entrega el primer

registro de Androlaelaps casalis (Berlese),

Haemogamasus horridus Michael y Proctolae-

laps pygmaeus (Muller) asociados a equinos esta-

bulados en Chile. Para cada una de las especies

se entrega: basinomio, sinonimia, redescripción

de los machos, esquemas originales y distribu-

ción geográfica conocida.

MATERIALES Y METODOS

Se realizó un muestreo estacional (primave-

ra, verano, otoño e invierno), entre los años 1991

y 1992, en el Regimiento Guías de Concepción,

de los siguientes sustratos: viruta, paja, (obtenidas

desde la cama de los equinos), heno, avena (obte-

nidas desde bodegas de almacenaje) y restos de

forraje en comederos. Se recolectó un total de 20

muestras, al azar y con un peso mínimo de 20 grs.

En el Laboratorio cada muestra, a excepción

de las muestras de avena, fue pre-tamizada, me-

diante el uso de un set de tamices con malla de 3

mm a 0.05 mm, para eliminar los tallos de la paja

y del heno de alfalfa. De cada una de las mues-

tras obtenidas en terreno (“muestras madres o

controles”) se separaron 4 submuestras equiva-

lentes a 9 cc cada una. En cada submuestra se

realizó un análisis cualitativo de las especies de

ácaros presentes, los cuales fueron separados y

fijados en alcohol 70%. El aclarado y montaje se

realizó con solución Nesbitt y Berlese respectiva-

mente.

Para cada especie determinada se incluyó:

basinomio válido, sinonimias, nombre común y

diagnosis de reconocimiento.

La identificación de las especies se realizó

utilizando, preferentemente, la clave pictórica de

Artigas y Casanueva (1983) y, las claves especí-

ficas de Hughes (1973). Para la diagnosis se si-

guió el procedimiento indicado por Artigas y

Casanueva (1983) para las especies del polvo de

habitación en Chile.

ABREVIATURAS USADAS EN EL TEXTO

: Abertura anal

a : Seta anal

AG : Abertura genital

g : Seta genital

J : Setas histerosomales

J-z : Setas propodosomales

P : Peritrema

PD : Placa dorsal

R : Seta marginal dorsal posterior

S : Seta ventral del idiosoma

st : Seta esternal

Stg : Estigma

TR : Tritosternum

vi : Seta vertical interna

RESULTADOS

En la prospección estacional de la fauna

acarológica asociada a equinos estabulados en la

ciudad de Concepción, básicamente en las mues-

tras estudiadas de paja y viruta (extraidas de ca-

mas de equinos), heno y avena (almacenada en

bodegas) y restos de forraje en comederos, fue

posible determinar la presencia de:

SUBORDEN MESOSTIGMATA

Familia Laelapidae

Androlaelaps casalis (Berlese, 1887)

(Figs. 1 - 4)

Iphis casalis Berlese, 1887.

Haemolaelaps casalis, Bregetova, 1956.

Hypoaspis oculatus Oudemans, 1915 (fide

Till, 1963).

Haemolaelaps molestus Oudemans, 1929;

Willmann, 1939 (fide Till, 1963).

Atricholaelaps megaventralis Strandtmann,

1947 (fide Till, 1963).

Hypoaspis freemani Hughes, 1948; Strandt-

mann, 1956.

Haemolaelaps haemorrhagicus Asanuma,

1952

Acaros asociados a equinos estabulados Androlaelaps casalis: CASANUEVA el al.

MAcHo

Deutosterno con seis hileras de cinco dien-

tes finos. Quelíceros con ambos dígitos bidenta-

dos, los dígitos fijos, portan un par de pilus

dentilis delgado; filamentos artropodiales subi-

guales en longitud (Fig. 3).

Placa dorsal, oval y reticulada, longitud

466-485 um; ancho 284-322 um. Tiene 39 pares

de setas simétricamente dispuestas, como tam-

bién un número variable de setas accesorias im-

pares entre la serie J; seta 14 y z2 son más largas

que la mitad de la distancia entre sus bases; las

setas posteriores más largas (Fig. 1).

Placa esternal reticulada; primer par de setas

esternales, casi tan largas como las setas metaster-

nales, pero algo más gruesas; segundo y tercer par

de setas esternales, levemente más largas que el

primer par. Placas metapodales elongadas de cua-

tro a siete veces más largas que anchas. Placa ge-

nital expandida y muy redondeada posteriormente,

con un patrón bién definido, reticulado, el cual se

extiende hasta el borde anterior de la placa. Setas

genitales (g1-g2) similares en longitud (Fig. 2).

Placa anal reticulada, aproximadamente tan

larga como ancha. Ano situado a una longitud

igual a la del margen anterior. Setas paranales in-

sertas en un nivel entre la mitad y el extremo

posterior del ano y aproximadamente de la mis-

ma longitud que las setas postanales (Fig. 4).

Quetotaxia de las patas, normal. Seta poste-

rior de la coxa lI, levemente más larga que la seta

anterior. Las tres setas ventrales y tres apicales

en el tarso II, son gruesas, pero no forman espi-

nas agudas. Setas, más bien finas y de una longi-

tud moderada. Longitud de los tarsos IV,

alrededor de seis veces más anchas en la base.

DISTRIBUCION

Cosmopolita (Hughes, 1973). Se ha encon-

trado en una amplia variedad de hospederos aves,

mamíferos y, también en paja, heno y detritus.

Se registra por primera vez para el país en

muestras obtenidas en comederos de equinos es-

tabulados de Concepción en primavera, verano e

invierno.

Familia Dermanyssidae

Haemogamasus horridus Michael, 1892.

(Figs. 5 - 8)

Haemogamasus horridus Michael, 1892;

Huges, 1961.

MAcHo

Idiosoma más largo que ancho, densamente

cubierto por setas cortas. En vista dorsal, con nu-

merosas setas cortas y lisas. Placa dorsal entera

en ambos sexos (Fig. 5).

En vista ventral, placa estarnal alargada con

tres pares de setas, seta metasternal libre y placa

genito-ventral en forma de gota con numerosas

setas; placa anal periforme con tres pares de setas

asociadas con el ano. Estigma (Stg) ubicado, la-

teralmente, a la altura de las coxas IV y peritrema

corto, dirigido anteriormente hasta la altura de la

base de la coxa Il (Fig. 6).

Quetotaxia de las patas normales, a excep-

ción de la gena IV que carece de la seta postero-

ventral y de la tibia IV que no posee una seta

postero-dorsal. Patas I y IV más largas que las

patas Il y IL

Gnatosoma evidente, con pedipalpos cortos,

gruesos y quetotaxia normal (Fig. 7). Tecto mul-

tidenticulado; un par de setas capitulares; hipos-

toma con tres pares de setas; deutosterno con 10

a 18 líneas transversas con pequeños y finos den-

tículos, cornículo en forma de cuerno, bien escle-

rotizado; estilos salivares bien desarrollados, de

igual longitud que el cornículo. Tritosterno bifur-

cado, apotele bifurcado. Quelíceros alargados,

quelados y dentado, con el segmento basal dos

veces más largo que ancho, dígitos cortos con

pocos dientes; pilus dentilis simple; el quelícero

porta el espermiodactilo en su dedo móvil, el

cual se recurva en su extremo distal; espermio-

dactilo no más largo que la longitud total del de-

do móvil (Fig. 8).

DISTRIBUCION

Gran Bretaña, Europa y Rusia (Evans «

Till, 1966). Se registra por primera vez para Chi-

le, en muestras obtenidas de camas de paja de

equinos estabulados de Concepción durante la es-

tación de primavera.

Familia Ascidae

Proctolaelaps pygmaeus (Muller, 1859)

(Figs. 9 - 11)

Gamasus pygmaeus Muller, 1859 (sensu

Evans, 1958: 200).

Hypoaspis hypudaei Oudemans, 1902 (sen-

su Evans, 1958: 200).

Typhlodromus bulbicolus Oudemans, 1929.

Gayana Zool. 58(1), 1994

Garmania bulbicola (Oudemans,1929) sen-

su Nesbitt, 1951.

Proctolaelaps (Proctolaelaps ) hypudaei

(Oudemans, 1902) sensu Hughes, 1961.

Evans,1958, dividió el género Proctolaelaps

en dos subgéneros: P. (Proctolaelaps) y P. (Neo-

jordensia). Chant, 1963 considera que ambos son

géneros diferentes.

MaAcHo

Longitud del idiosoma, aproximadamente

430 micrones. La superficie dorsal está casi com-

pletamente cubierta por una placa, con un fino

patrón reticulado. De él, nacen 43 pares de setas

largas, siendo las de la serie f, tanto o más largas

que la distancia entre sus bases. Un par de setas

nace de la región humeral (s2) y un par posterior

(z5), son más largas que las restantes. Las setas

marginales (R) de la mitad posterior de la placa,

nacen de ésta y no de la membrana interescutal

(Fig. 9).

En vista ventral, se observa que el margen

anterior de la placa esternal no está bien definido,

sostiene tres pares de setas y dos pares de poros.

La seta metasternal, nace de una pequeña placa,

asociada con el tercer poro esternal. La placa ge-

nital tiene forma subtriangular y porta un par de

setas. La placa anal es casi redonda y el ano, es

inusualmente grande. Porta tres setas anales, en

tanto nueve pares, también nacen de ambos de la

cutícula. Las placas peritrematal y exapodal, es-

tán separadas una de la otra (Fig. 10).

El gnatosoma se caracteriza por poseer un

cornículo sinuoso y porque las setas hipostoma-

les están agrandadas. El digito fijo de los quelíce-

ros, tiene una inusual fila de finos dientes. En su

base, tiene un lóbulo membranoso, con un borde

libre y aserrado (Fig. 11).

DISTRIBUCION

Cosmopolita (Hughes, 1961). Se le ha en-

contrado en cultivos de hongos y también se le

ha observado, alimentándose de Tetranychus ur-

ticae. Existen registros de su presencia en suelo,

hojas, harina, cebada y troncos de árboles. Tam-

bién se le ha encontrado en una variedad de árbo-

les, asociado con el ácaro de los cítricos Aculus

pelekassi Keifer. También se le ha registrado

desde nidos de pequeños mamíferos y, en gran

cantidad en desechos de ardillas, así como tam-

bién en edificios recién construídos y en galline-

ros. (Huges, 1961).

Constituye el primer registro para Chile. Se

encontró en muestras de avena almacenada en

bodegas, en la ciudad de Concepción, en prima-

vera, otoño e invierno.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

El análisis de las muestras provenientes de

comederos, cama de paja y avena almacenada de

equinos estabulados de la VIII Región-Chile,

permitió establecer la presencia de Androlaelaps

casalis (Berlese), Hoemagamaus horridus Mi-

chael, Proctolaelaps pygmaeus (Muller) (Acari:

Mesostigmata) y se señalan como primer registro

válido para el país.

Ninguna de las tres especies fue registrada

durante las cuatro estaciones del año, Androlae-

laps casalis no se recolectó en otoño, Proctolae-

laps pygmaeus no se registró en verano y

Haemogamasus horridus se recolectó sólo en pri-

mavera.

Estas tres especies son depredadoras de

otros artrópodos y se caracterizan en general, por

su rápido desplazamiento, por tener quelíceros

muy desarrollados con quelas grandes y con cutí-

cula muy quitinizada. Se desprende por tanto que

se deben realizar futuros estudios para ampliar

los conocimientos de la acarofauna asociada a

equinos estabulados y así determinar con preci-

sión cuales son las que juegan un papel importan-

te en los cuadros respiratorios de origen alérgico

en los equinos que permanecen estabulados por

períodos prolongados.

BIBLIOGRAFIA

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polvo de las habitaciones en Chile (Acari). Gaya-

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Gayana Zool. 58(1), 1994

Eric. 1. Vista dorsal de Androlaelaps casalis macho.

Eric. 2. Vista ventral de Androlaelaps casalis macho.

Acaros asociados a equinos estabulados Androlaelaps casalis: CASANUEVA et al.

Fias. 3-4. Macho de Androlaelaps casalis ; FIG. 3. Gnatosoma 160x; Fic. 4. Placa anal 400x.

Fics. 7-8. Macho de Haemogamasus horridus ; FIG. 7. Gnatosoma 100x; Fic. 8. Quelíceros 400x.

FiG. 11. Quelícero de Proctolaelaps pygmaeus macho 400x.

stabulados Androlaelaps cas

equinos e

lados a

Acaros asoc

ntral de Proctolaelaps pygmaeus

FiG. 9. Vista dorsal de Proctolaelaps pygmaeus

FiG. 10. Vista ve

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Gayana Zool. 58(1): 71-77, 1994

ISSN 0016-531X

STUDIES ON THE NEMATODES PARASITES OF ARGENTINE

CRICETID RODENTS

NEMATODES PARASITOS DE ROEDORES CRICETIDAE DE LA ARGENTINA

Carola Ana Sutton *

ABSTRACT

This paper studies two nematodes collected from

Cricetidae during a study on argentinean parasitologi-

cal fauna, 1.e.: Nematomystes rodentiphilus Sutton,

Chabaud % Durette-Desset, 1980 (Ascaridida-

Aspidoderinae) and Protospirura numidica criceticola

Quentin, Karimi £ Rodriguez de Almeida, 1968

(Spirurida-Spiruridae), found parasitizing unrecorded

hosts to date, Scapteromys aquaticus Thomas, and

Oxymycterus rufus (Desmarest) from different locali-

ties in Argentina.

These findings increase the host list for studied nema-

todes, for which to date, only Neotropical cricetid

rodents are known, giving us more details concerning

rodents parasitic fauna, their digenea having been

studied by Sutton (1983) and Sutton $ Lunaschi (in

press). For both nematode species, additional data are

given, concerning morphology, dimensions, localiza-

tion and an analysis on host distribution.

KeEYworDs: Nematoda, Morphology, Ascaridida,

Spirurida, Rodents, Argentina.

INTRODUCTION

This paper undergoes the study of two

nematodes Nematomystes rodentiphilus Sutton,

et al., 1980 (Ascaridida-Aspidoderidae-Lauro-

iinae) and Protospirura numidica criceticola

Quentin, et al., 1968 (Spirurida-Spiruridae),

* Departamento Zoología Invertebrados, Facultad de

Ciencias Naturales y Museo de La Plata, Paseo del

Bosque s/n., 1900 La Plata, Argentina.

RESUMEN

Este trabajo estudia dos nemf[atodos colectados de

Cricetidae durante un estudio sobre fauna parasitológi-

ca argentina, se tratan dos especies de nemátodos ya

conocidos, Nematomystes rodentiphilus Sutton,

Chabaud y Durette-Desset, 1980 (Ascaridida-

Aspidoderidae) y Protospirura numidica criceticola

Quentin, Karimi y Rodríguez de Almeida, 1968

(Spirurida-Spiruridae), hallados parasitando

hospedadores no registrados a la fecha, los cricétidos

Scapteromys aquaticus Thomas, o “rata de agua” y

Oxymycterus rufus (Desmarest) “hocicudo”. Estos ha-

llazgos incrementan la lista de hospedadores conoci-

dos los nemátodo estudiadoss, la que hasta el momento

sólo incluye cricétidos, y para los cuales han sido estu-

diados ya los digeneos (Sutton, 1983) y Sutton y

Lunaschi (in press). Para ambas especies de nemáto-

dos se entregaron datos adicionales relacionados con la

morfología, dimensiones, localización y un análisis

sobre la distribución de los hospedadores.

PALABRAS CLAVES: Nematoda, Morfología, Ascaridida,

Spirurida, Rodentia, Argentina.

found parasitizing unrecorded hosts to date ¡.e.

Scapteromys aquaticus Thomas captured in

Playa Bagliardi, 30 km from La Plata, Buenos

Aires, and Oxymycterus rufus (Desmarest) caught

in a brushy area, close to the water, in the

Parana's river Delta.

From the same hosts, Sutton (1983) and

Sutton € Lunaschi (in press) have studied the

digenean fauna as part of a series dedicated to the

study of Argentina's parasitological fauna.

Both reffered species are known as part of

the Neotropical nematofauna but parasiting other

cricetids. Complementary data are given con-

Gayana Zool. 58(1), 1994

cerning morphology, dimensions, localization

and host distribution.

MATERIAL AND METHODS

Nematodes were collected by the author,

from freshly killed hosts, fixed in boiling water

and stored in 70% alcohol. Specimens were pre-

pared for study in temporary wet mounts, first in

water and progressively in lactophenol. En face

preparations were made by cutting the cephalic

region by hand usimg a piece of a razor blade. In

the descriptions, measurements are quoted as the

range with meassurements given by other authors

in parentheses and are in millimetres.

Hosts were captured with Sherman traps, in

brushy areas with close relation to water.

Scapteromys acuaticus between wild irises, in

Balneario Bagliardi, 30 Km from La Plata (200

metres from the shore) and in the Parana”s river

Delta and Oxymycterus rufus only in the second

place mentioned.

Specimens were deposited in the Helmin-

thological Collection of the La Plata?s Museum,

Argentina (MLP).

Identification of hosts follows Cabrera,

(1961.)

RESULTS

Nematomystes rodentiphilus Sutton,

Chabaud and Durette-Desset, 1980.

(Figs.1-12)

Hosts: 1) Scapteromys aquaticus Thomas

and 2) Oxymycterus rufus (Desmarest)

OTHER HOSTS: Oxymycterus misionalis

Sandborn, from arroyo Zaimán, Misiones,

Argentina.

LocATION: caecum and large intestine; a

coparasite of Levinseniella (Monarhenos) cruzi

Travassos, 1920 in Scapteromys aquaticus.

MATERIAL EXAMINED: 1) from Scapteromys

aquaticus col Helm., MLP n* 2206 D, other

material 2184 D, 2187 D 2205 D, 2) from

Oxymycterus rufus, col. Helm. MLP n* 838 D,

1224 D, 1226 D, 1233 D.

LocaLrry: 1) Playa Bagliardi (57 05” W and

34” 52* S) Partido de Berisso, and Talavera Island,

Km100, Partido de Campana, Buenos Aires

Province. 2) Talavera Island, Km 100, Partido de

Campana, both Province of Buenos Aires.

REDESCRIPTION: measurements in mm

(range), between brachets those given by Sutton

et al.. (1980).

Rather small nematodes, white when alive.

Male slighly smaller than female. Mouth sur-

rounded by three well developed lips with the

anterior margin formed by two or three lobes,

axially protuberant. Each lip is prolongued back-

wardly in a complex structure formed by six

plaques, a big central one, posteriorly rounded

and two smaller lateral ones, which are rectangu-

lar and inserted on one side, close to bucal mar-

gin and on the other, against lateral border of

central plaque. These plaques are continued back

and sidewardly by a transparent membranous

structure, posteriorly truncated (Fig. 2-4).

Lips, plaques and membranous structures as

a whole, are separated from the rest of the body

by a postlabial groove. (Fig. 2-3)

Dorsal lip bigger than lateroventral ones.

Cephalic disk with 4 cephalic and 2 externo later-

al labial papillae, and 2 amphids posterior to

theese, close to cephalic groove.

MALE: n= 5.

Smaller than female, 5.377-6.084 long

[3.52-4.032] and 0.150-0.180 [0.126-0.270]

wide. Deirids, nervous ring and excretory pore

0.051-0.064; 0.204 and 0.291 from apex.

Oesophagus claviform, with conspicous valvular

apparatus, 0.451-0.522 [0.570-0.864] long; phar-

ynx 0.051-0.060 long. Posterior extremity taper-

ing gradually, with caudal appendage 0.041-

0.064 [0.072-0.100] long, distally rounded.

Ventral surface with genital sucker, rounded with

thick border 0.060 x 0.052 [0.072-0.050] in

diameter, 0.046 [0.030-0.050] from cloacal aper-

ture and 14 pairs of papillae, with following dis-

tribution: 2 pairs anterior and one pair lateral to

genital sucker; two pairs between genital sucker

and cloaca and nine pairs postcloacal. (Fig. 9).

Phasmids close to last pair of papillae. Cloaca

0.21 - 0.30 from tip of tail. Tail 0.07 - 0.09 [0.07-

0.10]. Spicules big and identical heavily chi-

tinized, slighly curved, 0.26-0.35 [0.48 -0.63]

long. Gubernaculum subtriangular in frontal

view, 0.07 - 0.09 [0.11-0.13] long.

FEMALE: n= 6.

5.18-8.09 [1.73-5.7] long and 0.12-0.25

[0.11-0.31] wide. Deirids, nervous ring and

Studies on the nematodes parasites of Argentine cricetid rodents: Surron, C. A.

excretory pore at 0.05-0.07; 0.16-0.25 and 0.27 -

0.33 from apex. Oesophagus 0.46-0.57 [0.48-

0.71] long. (Fig.8). Pharynx 0.08. Amphidelphic,

vulva at 1.39-1.73 [2.02-2.89] from apex; can be

everted, (Fig.11). Anus at 0.46-0.65 [0.24-0.43]

from cauda. Tail with blunt ending. (Fig.12).

Eggs big, sub-elliptical without ornamentation

0.064-0.076 [0.060-0.080] long and 0.039-0.048

[0.040-0.050] wide, without embryo when laid.

Sutton et al., (1980) described Nemato-

mystes rodentiphilus from the caecum of another

Neotropical cricetid, 1.e.: Oxymycterus misionalis

Sandborn, captured in a brushy area, close to a

small stream from the province of Misiones,

(Nothern Argentina).

The genus Oxymycterus includes within its

normal range of habitats, swamps, marshes,

erasslands, brushy areas, woodlands and forests,

and Scapteromys that is a semiacuatic rodent,

occupies marshy places and frequently innundat-

ed areas (Nowak et al., 1983). Hosts studied in

this ocassion have all been captured in habitats

with close relation to water. Although to date, no

data is available concerning the biology of this

nematode, 1t becomes clear that it's under these

special ecological surroundings that it takes

place, suggesting that host - parasite specificity 18

strong!y influenced by ecological factors.

This finding gives us a larger view of this

species geographical distribution and host list, to

date belonging to a monospecific genus, describ-

ing and measuring structures overlooked in origi-

nal description and adding drawings that

complete it's understanding.

Protospirura numidica criceticola Quentin,

Karimi and Rodriguez de Almeida, 1968

(Figs. 13-18)

Host: Scapteromys aquaticus Thomas.

LocATION: stomach and small intestine (new

localization)

OTHER HOSTS: stomachs of Akodon azarae

azarae (Fischer); A. boliviensis Meyen; A. jelskii

(Thomas); Bolomys lasiurus (Lund, 1819);

Calomys callosus (Rengger, 1830) and Oryzomys

nigripes (Desmarest, 1819) (experimental).

MATERIAL EXAMINED: 2 _ and 4 _ col. Helm.

MIE? 0 2206E:(1- y 12) yn 2212 B (4 y 1).

LocaLrry: Balneario Bagliardi (57% 05” W

and 34” 52 S) Partido de Berisso, Buenos. Aires,

Argentina.

MEASUREMENTS: (indicated in mm) range,

between brachets those given by Quentin et al.,

(1968) first, and second those by Sutton, (1989)

in other hosts.

MALE: n=2.

LENGTH: 29.50 [24.5] and [15.76-23.40];

width: 0.54-0.65 [0.60] and [0.36-0.48]; deirids-

apex: 0.24-0.26 [0.25] and [0.20-0.23]; nervous

ring-apex: 0.48 [0.38] and [0.34-0.41]; excretory

pore-apex: 0.56-0.61 [0.53] and [0.48-0.56];

muscular oesophagus: 0.30 [0.37] and [0.13-

0.38]; glandular oesophagus: 6.55-6.78 [3.85]

and [3.13-3.84]; Pharynx laterally compressed,

length: 0.12 [0.12] and [0.06]; head diameter:

0.13-0.14 [not given] [0.09]; central lip lobule:

0.04 high by 0.05 wide; cloaca-posterior extremi-

ty: 0.46 [0.33] and [0.27-0.31] (Fig.16); Right

spicule: 1.60 [1.25] and [1.16-1.37]; left spicule:

0.55 [0.47] [0.34-0.48]; gubernaculum: 0.20

[0.08] [0.10-0.13] (Fig. 17); Bursa: 2.7[-] [-]

long, with 10 pairs of papillae, four precloacal

and six postelocal and one papillae situated in

centre of anterior cloacal margin. Phasmids close

to last pair of papillae, (Fig.16).

FEMALE: n= 5.

LenGTH: 52.00 - 65.00 [50.0] [15.28-30.41];

width: 0.85-1.45 [0.76] [0.40-0.57]; deirids-apex:

0.32-0.33 [0.26] and [0.17-0.22]; nervous ring-

apex: 0.58-0.67 [0.46] and [0.26-0.40]; excretory

pore-apex: 0.67-0.76 [0.57] and [0.36-0.56]:

muscular oesophagus: 0.50-0.55 [0.37] [0.25-

0.40]; glandular oesophagus: 7.8-9.4 [5.6] [2.7-

3.76]; length of pharynx: 0.18-0.23 [0.17] and

[-]; head diameter between anphids: 0.13-0.25 [-]

[0.10]; vulva-cauda: 36.0 [21.0] and [5.93-

10.95]; anus-cauda: 0.41-0.62[-] and [0.22-0.61|];

eggs: 0.058-0.055 x 0.035- 0.040 [0.045 x 0.033]

and [0,33-0,37 x 0,37-0,56], with embryo when laid.

DISCUSSION

Protospirura numidica Seurat, 1914, is a

widespread species of nematode and may be

found present in all major habitats from the vege-

tated dunes of the Great Salt Lake Desert at 4200

feet to the alpine tundra at 11500 feet (Crook et

al., 1964). The subspecies P. n. criceticola was

described by Quentin et al. (1968) upon speci-

mens found parasiting cricetids from Brazil, in

order to separate them from the species created

by Seurat (1914) based on morphological, geo-

Gayana Zool. 58(1), 1994

graphical and ecological differences, and inclu-

ding in it, all the north american helminths

named as Protospirura numidica parasiting diffe-

rent mammal species, mainly rodents.

This subspecies has been found in the sto-

machs of several Neotropical species of cricetids

1.e.: Bolomys lasiurus (Lund, 1839) = Zygodon-

tomys lasiurus and Calomys callosus (Rengger,

1830) by Quentin ef al. (1968) and in Akodon

azarae azarae (Fisher), A. boliviensis Meyen and

A. jelskii (Thomas) by Sutton (1989).

Cricetids are ubiquitous animals, and an

analysis of habitats occupied by those species

mentioned above, indicates that, with the excep-

tion of Akodon jelskii, all have been found to

include within their normal habitats, areas in

close or relatively close relation to water, so sta-

ted by Reig (1964), Olrog € Lucero (1980),

Nowat é Paradiso (1983), Mares et al. (1989),

Massosia et al. (1964) and Redford et al. (1992).

In order to find an explanation to such an

array of hosts for this nematode, which includes

the Scapteromiini, Akodontiini and Phyllotiini

tribes, and to which a new Scapteromiini must be

added, ¡.e Scapteromys aquaticus Thomas, 1t

must be taken in account that the latter has also

been captured in areas with characteristics refe-

red above. This fact seems to aid Protospirura

numidica criceticola to conclude its life cycle in

an ample variety of habitats evidently under the

basis of ecological factors, more than in refe-

rence to precise host species, adding further evi-

dence to that one stated by Quentin et al. (1968).

ACKNOWLEDGEMENTS

This research project was supported by

CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones

Científicas Técnicas, Argentina) and is part of

the Bianual project (PIB) n* 245 -5076-89.

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Studies on the nematodes parasites of Argentine cricetid rodents: Surron, C. A.

Nematomystes rodentiphilus Sutton et al., 1980:

Fic. 1. female, anterior extremity, ventral general view; FIG. 2. male, ventral view; FIG. 3. idem, ventral view:

Fic. 4. female, sublateral view; Fic. 5. idem, apical view at level of pharynx.

Scale bars: 1 to 7= 20 um; 9-10= 50 um; 8-11-12= 100 um. *

BES

Gayana Zool. 58(1), 1994

Nematomystes rodentiphilus Sutton et al., 1980:

Fics. 6-7, idem apical view; Fic. 8 idem, anterior extremity lateral view; FiG. 9 male, bursa ventral view;

Fic. 10. idem, right lateral view; Fic. 11. female, vulva and eveted vagina; FIG. 12. idem, cauda lateral view.

Scale bars: 1 to 7= 20 um; 9-10= 50 um; 8-11-12= 100 um.

Studies on the nematodes parasites of Argentine cricetid rodents: Surron, C. A.

Protospirura numidica criceticola Quentin, et al., 1968:

F¡G. 13. female, anterior extremity ventral view; Fic. 14. idem lateral view; Fic. 15. idem, cauda, left lateral view;

FiG. 16. male bursa ventral view; FIG. 17. small spicule and gubernaculum, left lateral view; Fic. 18. female, labial

lobules.

Scale bars: 13-14-16-17= 50 um; 15= 100 um; 18= 10 um.

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Gayana Zool. 58(1): 79-90, 1994

ISSN 0016-531X

OVIPOSTURA Y DESARROLLO INTRACAPSULAR DE

XANTHOCHORUS CASSIDIFORMIS (BLAINVILLE, 1832) (GASTROPODA,

MURICIDAE) DE LA COSTA SUR DE CHILE

EGG MASS AND INTRACAPSULAR DEVELOPMENT OF XANTHOCHORUS

CASSIDIFORMIS (BLAINVILLE, 1832) (GASTROPODA, MURICIDAE)

FROM THE SOUTH COAST OF CHILE

Carlos S. Gallardo y Katerina González*

RESUMEN

Se describe la ovipostura, el desarrollo intracapsular y

el estadio larval posteclosión del gastrópodo

muricáceo Xanthochorus cassidiformis. Las ovipos-

turas estudiadas fueron ovipositadas en acuarios por

animales adultos procedentes de Bahía Metri (Seno de

Reloncaví).

Los huevos son relativamente medianos (diámetro

promedio= 232 um) y su número por ovicápsula varió

entre 325 y 733. Todos ellos fueron fértiles, no

observándose huevos nutricios. El desarrollo intracap-

sular, controlado a temperatura ambiente de laborato-

rio (16-20%C), culminó a los 30-34 días con la eclosión

de larvas libres planctotróficas cuya longitud promedio

de la concha fue de 425 um. A los 23 días de cultivo

alcanzaron un tamaño de 492 um y murieron, sin

haber alcanzado aún la etapa de metamorfosis.

El desarrollo de X. cassidiformis se asemeja al de la

especie chilena Crassilabrum crassilabrum, con la

cual comparte huevos relativamente medianos que

generan larvas de aproximadamente 400 um. Esto las

diferencia de especies chilenas con huevos pequeños y

numerosos (Thais haemastoma, Thais chocolata, y

Concholepas concholepas) como también de aquéllas

con larva Veliconcha o desarrollo directo logrado en

base a huevos nutricios (Chorus giganteus, Nucella

crassilabrum, Trophon laciniatus, y Trophon gever-

sianus). Se discute en qué medida los diferentes modos

de eclosión observados en estos muricáceos muestran

relación con su distribución latitudinal en la costa de

Chile.

PALABRAS CLAVES: Desarrollo intracapsular; Desarrollo

Xanthochorus; Cápsulas ovíferas; Xanthochorus cas-

sidiformis.

*Instituto de Zoología, U. Austral de Chile, Casilla

567, Valdivia.

ABSTRACT

The egg-mass, including the development of encapsu-

lated embryos and the posthatching larval stage of the

muricacean gastropod Xanthochorus cassidiformis are

described. The egg-masses studied were spawned in

laboratory aquaria by adult snails collected at Metri

Bay (Seno de Reloncaví).

The eggs are medium sized (mean diameter= 232 um)

and the number per capsule varied between 325 and

733. All of them were fertile and, consequently, no

nurse eggs did exist. At laboratory temperature (16-

20%C) the intracapsular development was completed

after 30-34 days, hatching planktotrophic swimming

larvae of 425 um in mean shell lenght. After 23 days

of hatching, they attained 492 um in lenght and died.

Until then, no sign that metamorphosis was near to

begin was observed.

Compared with other Chilean muricaceans, the

development observed in X. cassidiformis resembles

that of Crassilabrum crassilabrum in having eggs and

hatched larvae of comparable size. By these traits they

differ from species producing relatively small and

more numerous eggs (Thais haemastoma, Thais

chocolata and Concholepas concholepas) as well from

those generating free swimming Veliconcha larvae or

experiencing a direct type of development through the

provision of nurse eggs (Chorus giganteus, Nucella

crassilabrum, Trophon laciniatus and Trophon gever-

sianus). Possible relationships between the hatching

type experienced by all these muricacean snails and

their latitudinal distribution along the Chilean coast,

are discussed.

KEYwoRDs: Intracapsular development; Xanthochorus

development; Egg-capsules: Xanthochorus cassidi-

formis.

Gayana Zool. 58(1), 1994

INTRODUCCION

Cada día resulta más evidente que los datos

sobre la ontogenia temprana de un organismo

aportan importantes antecedentes sobre sus rela-

ciones evolutivas como también acerca de

interacciones ecológicas fundamentales de la

especie con el medio en el cual ella inicia y

desarrolla su ciclo de vida. Por su alta diversidad

en cuanto a tipos de desarrollo embrionario-lar-

val y sus regularidades ecológicas, los prosobran-

quios marinos fueron considerados por Thorson

(1950) como el barómetro de las condiciones

ecológicas en el ambiente marino. Un hallazgo

notable de este autor, que hasta hoy día resulta

intrigante, es el hecho que el tipo de desarrollo

larval predominante entre las especies bentónicas

varía de acuerdo a un gradiente latitudinal desde

el trópico a los polos y viceversa; mientras en

aguas tropicales predominan especies con

eclosión de larvas planctónicas, hacia latitudes

más altas éstas van siendo reemplazadas por

especies con desarrollo larval más breve y/o de

tipo predominantemente directo. El fenómeno,

extensible en general a varios grupos de inverte-

brados bénticos, fue posteriormente corroborado

y discutido por Mileikovsky (1971). En el caso

de los prosobranquios muricáceos esta tendencia

ha sido reexaminada con un mayor número de

casos e incluyendo además un análisis del fenó-

meno en función del tipo de hábitat ocupado por

las diferentes especies (Spight, 1977). Este autor

concluye que, al menos entre los murícidos, la

regularidad encontrada por Thorson necesita aún

ser reevaluada en función de dicha variable una

vez que se conozca el desarrollo en un mayor

número de especies, sobre todo de ambientes

litorales aún poco accesibles y por lo mismo

poco explorados (por ej. fondos arenosos some-

ros y aguas profundas). En varios otros aspectos,

los prosobranquios murícidos han sido objeto de

estudios comparados tendientes a evaluar las

implicancias ecológico-evolutivas tanto del

tamaño de eclosión de sus larvas o juveniles

(Spight, 1976) como de diversos otros paráme-

tros y rasgos de sus historias de vida (Spight et

al., 1974).

La costa de Chile (ubicada en el hemisferio

menos estudiado) posee un amplio rango latitudi-

nal (sobre 4000 km) dentro del litoral Pacífico

sur-oriental, por lo cual el conocimiento del

desarrollo larval en muricáceos de esta parte del

océano puede aportar importantes antecedentes

para discutir las relaciones ecológicas antes

señaladas. Hasta el momento se conocen antece-

dentes del desarrollo sólo en muy pocos cara-

coles murícidos de esta costa (Cañete, 1992;

Gallardo, 1979a, 19709b, 1980, 1981; Penchas-

zadeh, 1976; Zaixso, 1973) y en el presente tra-

bajo abordamos dicho estudio para el caso del

caracol de fondo arenoso Xanthochorus cassidi-

formis (Blainville, 1832). En este estudio se

describen las oviposturas, la productividad de

huevos, embriones y larvas como también el

desarrollo intracapsular de éstos, poniendo espe-

cial atención en el estadio de eclosión observado

en esta especie. Los datos obtenidos se comparan

con información similar existente para otros

murícidos chilenos a fin de discutir las tenden-

cias O patrones que se observan en dicha familia

en esta área geográfica del océano Pacífico.

Aparte de su importancia zoológica, los

caracoles murícidos de la costa de Chile han

adquirido una gran importancia económica como

recurso pesquero, siendo el caso del molusco

“loco” Concholepas concholepas (Bruguiére,

1789) el mejor conocido a nivel de la pesquería

mundial de gastrópodos (Castilla, 1982). Por lo

tanto, el estudio de la ontogenia temprana de

estos moluscos es un aporte importante al

conocimiento de su biología y, de diversas for-

mas, una contribución al conocimiento básico

que se necesita para un manejo más racional de

estos valiosos recursos marinos.

MATERIAL Y METODOS

Los ejemplares de X. cassidiformis fueron

obtenidos en la localidad de Metri, Seno de

Reloncaví (41*36'S; 72%43”"W) en noviembre de

1991. En seguida fueron transportados al labora-

torio en Valdivia donde se les mantuvo en acua-

rios de circuito cerrado, siendo alimentados con

moluscos bivalvos específicamente Mytilus

chilensis Hupé, 1854. :

Una vez que los animales ovipositaron sus

huevos en las paredes del acuario, parte de las

oviposturas fueron colocadas en recipientes de un

litro donde fueron mantenidas en cultivo a tem-

peratura ambiente de laboratorio (fluctuante entre

16 a 20*C). Se hicieron observaciones periódi-

Ovipostura y desarrollo intracapsular de Xanthochorus cassidiformis: GALLARDO, C. S. € K. GONZALEZ

cas, limpieza y renovación del agua del reci-

piente hasta que ocurrió la eclosión de las larvas.

Una parte de estas larvas fue cultivada durante 30

días en agua de mar filtrada siendo alimentadas

con Isochrysis galvana.

A medida que transcurría el desarrollo, parte

de las ovicápsulas obtenidas en acuarios iban

siendo separadas de sus Oviposturas e inspec-

cionadas para caracterización y registro fotográ-

fico de los estadios observados. Otra fracción de

las mismas era preservada en formol-agua de mar

al 5% para posterior medición y recuento de los

huevos o embriones en cada cápsula; las observa-

ciones, recuentos y mediciones se hicieron bajo

microscopio estereoscópico Wild M8 provisto de

un micrómetro ocular y equipo fotográfico

Photoautomat MPS 45. Para los dibujos, se uti-

lizó un tubo de dibujo Wild montado al micros-

copio estereoscópico ya señalado.

RESULTADOS

CARACTERISTICAS DE LAS OVIPOSTURAS

Ejemplares adultos de X. cassidiformis, con

tamaño promedio de 58.1 mm, ovipositaron sus

huevos aproximadamente un mes después desde

que fueron colocados en los acuarios. Las

oviposturas se depositaron estrechamente agre-

gadas en un área definida del acuario como tam-

bién sobre la concha de algunos congéneres

(Fig. 1). El número de cápsulas por ovipostura

varió entre 38 y 112, las que fueron agrupadas

generalmente en un solo estrato (Fig. 2.2). Esta y

otras variables de la ovipostura como del desar-

rollo intracapsular, se resumen en la Tabla 1.

Cada ovicápsula (ver Fig. 2.1) presenta una

coloración crema opalescente con un cuerpo

ovoide aplanado, ligeramente curvado y con una

hendidura longitudinal en su línea media dorsal;

el cuerpo capsular midió en promedio 11,5 mm

de longitud. En su extremo basal nace un pedún-

culo fino y largo (8.4 mm en promedio) que se

adhiere distalmente al sustrato mediante una

secreción cementante. En el extremo apical se

observa un opérculo o tapón mucoso que cierra el

orificio de eclosión. Parte de las ovicápsulas

observadas (aproximadamente un 6%) presen-

taron una morfología atípica (Fig.3). El número

de huevos y embriones tempranos por cápsula

varió entre 325 y 733 y dicha variable muestra

una asociación significativa (r= 0.42; P= 0.01)

con el tamaño (longitud) ovicapsular (Fig. 4). Sin

embargo el coeficiente de determinación

obtenido en esta regresión (r?= 0.18) indica que

sólo el 18 % de la variación en el número de

huevos es explicada por la variación de la longi-

tud ovicapsular a diferencia de lo que ocurre en

C. concholepas donde dicho coeficiente es

mucho mayor (r?= 0.87; Castilla € Cancino,

1976).

DESARROLLO INTRACAPSULAR Y LARVAS

POSTECLOSION

Los huevos de X. cassidiformis son relativa-

mente vitelados y la variación de su tamaño

muestra una distribución normal (Fig. 5) con un

diámetro promedio de 232 um. En la Fig. 6A-C

se ilustran distintas etapas de la segmentación de

estos huevos. Tanto durante el desarrollo tempra-

no de éstos como en los estadios embrionarios

siguientes, nc se encontró evidencias de que esta

especie poseyera huevos nutricios.

En estadio trocófora (Fig. 6D) las larvas

intracapsulares alcanzan una longitud promedio

de 333 um, y a ambos lados de la zona media del

cuerpo se observan los riñones larvales o “células

nucales” característicos en muchos embriones

encapsulados de prosobranquios (Gallardo, 1973,

1979a).

En estadio prevelíger a velíger temprana

(Fig. 6E) la larva mide 387 um de longitud y pre-

senta ya un esbozo de la concha la cual, sin pre-

sentar aún enrollamiento, cubre el hemisferio

inferior del embrión. Persisten los riñones lar-

vales y aparecen los ojos como también los cilios

trocales ubicados en leves expansiones lobulares

que constituirán el futuro velum.

En fase velíger (Fig. 6F) la concha presenta

un mayor desarrollo y enrollamiento observán-

dose la aparición del canal sifonal. El velum es

claramente bilobulado y se observa un mayor

desarrollo del pie, además de la presencia del

corazón larval.

En estadio velíger de eclosión, la concha

larval mide 425 um de longitud promedio (Fig.

6G), observándose también un mayor desarrollo

del pie. A través de la concha se observa clara

reducción del vitelo y son visibles los principales

órganos del sistema digestivo larval (esófago,

estómago, intestino y glándula digestiva) con

Gayana Zool. 58(1), 1994

características típicas de una larva libre planc-

totrófica. El desarrollo intracapsular culminó con

la eclosión de estas larvas después de un período

aproximado de 30 a 34 días; las oviposturas

fueron cultivadas en laboratorio a temperatura

ambiente que fluctuó entre 16 a 20*C.

A los 23 días de cultivo posteclosión, las

larvas velíger (Fig. 6H) han alcanzado 492 um de

longitud de concha. Presentan cambios notorios

tales como un mayor desarrollo del velum el cual

muestra una zona de pigmentación en el área dis-

tal de cada lóbulo. El pie muestra también un

mayor grado de crecimiento y está provisto de

cerdas sensoriales en su extremo posterior. Una

situación similar se observa en los tentáculos

cefálicos que junto con mostrar un mayor creci-

miento (especialmente el derecho) muestran tam-

bién cerdas sensoriales en su extremo distal. La

concha larval presenta su borde anterior aguzado

en la línea media como resultado del crecimiento

de una forma de espolón dorsocentral similar al

observado en otras larvas v.!íguz de prosobran-

quios (Osorio ef al., 1992). No se hicieron obser-

vaciones en las larvas más allá del período aquí

señalado.

DISCUSION

Los resultados de este estudio permiten con-

cluir que X. cassidiformis posee un desarrollo

indirecto con eclosión de larvas pelágicas típica-

mente planctotróficas. Tal tipo de desarrollo es

también compartido por los murícidos chilenos

C. concholepas y Thais chocolata (Duclos,

1832). Sin embargo, X. cassidiformis contrasta

claramente con estas especies, ya que al poseer

un huevo significativamente más grande su larva

de eclosión alcanza también un tamaño y grado

de desarrollo mucho más avanzado (Tabla II);

ésta prácticamente duplica en tamaño a la de Th.

chocolata. Los datos de la Tabla confirman, entre

los murícidos chilenos, la relación predicha por

Spight (1976) entre tamaño del huevo de una

especie y su correspondiente tamaño de eclosión

como ya lo había señalado también Cañete (in lit-

teris) en su estudio sobre Crassilabrum crassi-

labrum (Sowerby,1834). No obstante cabe

destacar que el tiempo de desarrollo intracapsular

ocupado por los embriones de Xanthochorus es

muy parecido al observado en C. concholepas y

Th. chocolata (Gallardo, 1973; Ramorino, 1975;

Cañete, com. pers.) aun cuando el grado de

desarrollo alcanzado por su estadio de eclosión

es, como ya se señaló, más avanzado; una expli-

cación de este hecho no parece residir básica-

mente en el factor temperatura de cultivo, por

cuanto dicho parámetro varió en rangos no muy

distintos en el caso de estas tres especies com-

paradas.

El desarrollo intracapsular de Xanthochorus

presenta más bien estrecha similitud con aquél de

C. crassilabrum murícido con el cual comparte

un tamaño de huevo y tamaño de eclosión larval

muy parecidos. Si bien hay diferencia en el

número de embriones por cápsula, ello más bien

refleja las diferencias en el tamaño ovicapsular

de ambas especies, siendo éste mayor en el caso

de Xanthochorus (ver Tabla ID). El tiempo de

desarrollo requerido por las larvas libres de este

último para alcanzar su metamorfosis, es un dato

que no fue determinado en el presente estudio;

dicho parámetro está en relación con el tamaño y

estructura final que debe alcanzar esta larva al

momento de asentarse. En el caso del “loco” (C.

concholepas) el tamaño de asentamiento es de

aproximadamente 1.4 mm (Arias, 1983) y el

tiempo de desarrollo de las larvas en los cultivos

excede los 3 meses (DiSalvo, 1988). A pesar de

ésto, muchos murícidos poseen un tamaño cer-

cano a 1 mm al momento de iniciar su vida juve-

nil en el bentos (Spight, 1976). En C. crassi-

labrum, especie con desarrollo intracapsular

semejante a X. cassidiformis, Cañete (man. inéd.)

estimó un tamaño de asentamiento de 0.9 mm y

en el caso de Chorus giganteus (Lesson, 1829)

tal tamaño es también muy parecido, confirman-

do lo que parece ser la norma para muchas

especies de esta familia (Spight, 1976). Esto sin

embargo no autoriza a predecir una situación

similar en el caso de X. cassidiformis mientras no

se cuente con los datos respectivos.

El cuadro de la Tabla II, que resume la

información existente en 9 murícidos que habitan

la costa de Chile, nos permite discutir algunos

patrones o tendencias si atendemos a los estadios

de eclosión y a algunas variables fundamentales

del desarrollo. Entre los murícidos con desarrollo

indirecto se distingue un primer grupo formado

por Thais haemastoma (Linneo, 1767), Th.

chocolata y C. concholepas con una baja asig-

nación de recursos a cada huevo; éstos son relati-

vamente pequeños (menores de 200 um) y muy

Ovipostura y desarrollo intracapsular de Xanthochorus cassidiformis: GALLARDO, C. S. € K. GONZALEZ

numerosos (generalmente varios miles) dando

origen a una larva libre cuyo tamaño máximo es

menor de 300 um. Esto implica, al menos en el

“loco,” un desarrollo larval libre relativamente

prolongado y sujeto a una alta mortalidad que se

ve reflejada en el alto número de larvas

eclosionadas desde las ovicápsulas. Como segun-

do grupo en esta misma categoría de desarrollo,

aparecen especies (C. crassilabrum y X. cassidi-

formis) con huevos relativamente medianos (200

a 300 um) capaces de originar larvas de tamaño

igual o ligeramente superior a 400 um y con una

producción de sólo algunos cientos de larvas por

ovicápsula; por su morfología más avanzada, es

posible que estas larvas tengan un desarrollo

libre más breve que las larvas de los murícidos

del primer grupo. La eclosión de larvas muy

desarrolladas y prácticamente muy cercanas a la

metamorfosis (larvas tipo Veliconcha) se observa

en el caracol Ch. giganteus. Observaciones en

este murícido (Gallardo, 1981) sugieren un

suplemento alimenticio intracapsular aportado

por huevos nutricios, debido a lo cual el desarro-

llo de larvas tan avanzadas (cerca de 1 mm) se

logra con huevos sólo levemente más grandes

que aquéllos de las especies del grupo anterior.

Por último, observamos un grupo de especies con

desarrollo de tipo directo integrado por Nucella

crassilabrum (Lamarck, 1816), Trophon lacinia-

tus (Martyn, 1784) y Trophon geversianus

(Pallas, 1769). En los murícidos chilenos aquí

analizados, este desarrollo evolucionó mediante

la provisión suplementaria de huevos nutricios.

De este modo, huevos medianos, de tamaño simi-

lar al de las especies de los grupos anteriores,

originan juveniles bentónicos iguales o superio-

res a 1 mm; la existencia de huevos nutricios

determina además una amplia variación del

tamaño de eclosión entre las distintas especies

como se observa en estos casos. Otra alternativa

que han seguido los murícidos para alcanzar un

desarrollo directo, es la evolución de un huevo

grande que supera los 600 ó 900 um de diámetro

y capaz de originar un juvenil ligeramente supe-

rior a 1 mm. Esta estrategia, descrita en muríci-

dos del hemisferio norte (Spight, 1976), hasta el

momento no se ha observado entre las especies

chilenas, por lo menos en las hasta aquí estudi-

adas.

La información existente para 9 especies de

murícidos de la costa de Chile, nos permite tam-

bién analizar si el tipo de desarrollo observado en

ellas se relaciona o no con la distribución latitu-

dinal de las especies de acuerdo al patrón de

relación predicho (Thorson, 1950; Spight, 1977).

En términos generales, el esquema predicho

pareciera cumplirse entre los murícidos chilenos

analizados, especialmente si se compara especies

con distribuciones latitudinales claramente

opuestas. En este sentido, una especie de baja

latitud como es Th. chocolata posee larvas pelág-

icas y planctotróficas y lo mismo ocurre en Th.

haemastoma de la costa norteamericana

(D”Asaro, 1966), especie que se distribuye tam-

bién en la costa norte de Chile. Especies de la

costa norte que alcanzan además latitudes inter-

medias (Cr. crassilabrum y X. cassidiformis),

desarrollan también larvas pelágicas aunque con

un aumento del tamaño del huevo y un mayor

tamaño de dichas larvas al eclosionar. En cam-

bio, especies restringidas a altas latitudes (Tr.

laciniatus y Tr. geversianus) muestran desarrollo

directo con eclosión de juveniles de gran tamaño.

Por su parte un murícido de latitudes medias

como lo es Ch. giganteus presenta un desarrollo

de tipo intermedio; hay eclosión de una larva

muy cercana al estadio juvenil pero que aún per-

manece un breve tiempo en la columna de agua

antes de metamorfosear (Gallardo, 1981). La

situación no es concluyente para las especies que

se distribuyen en todo el rango latitudinal de la

costa de Chile; en este caso, mientras C. concho-

lepas posee larvas típicamente pelágicas y planc-

totróficas, N. crassilabrum posee un desarrollo

de tipo directo. Esta última situación tal vez

indique que la supuesta relación entre latitud y

estadio de eclosión, sólo se cumple cuando se

comparan especies que, en relación con su origen

y pertenencia zoogeográfica, ocupan aún rangos

latitudinales claramente contrastantes dentro del

gradiente costero. En este sentido, los modos de

desarrollo podrían ser un buen indicador del cen-

tro de origen (latitudinalmente hablando) que

poseen los distintos géneros, al menos dentro de

la familia Muricidae.

Spight (1977) considera que en el caso de

los murícidos, los cambios en el modo de desa-

rrollo relacionados al gradiente latitudinal deben

ser también analizados en función del tipo de

hábitat en que estas especies viven. El autor com-

paró murícidos de costa rocosa, arrecifes ostríco-

las, fondos arenosos someros y aguas profundas.

Su conclusión, considerando especies de dife-

rentes mares, fue que el cambio predicho en el

Gayana Zool. 58(1), 1994

modo de desarrollo de acuerdo al gradiente lati-

tudinal, es mucho más evidente entre las especies

de fondo rocoso y arrecifes ostrícolas que en

aquéllas de fondo arenoso y aguas profundas. En

estos dos últimos ambientes prevalecen muríci-

dos con desarrollo directo en todas las latitudes.

Es importante señalar que en fondos arenosos

aparece también un desarrollo intermedio con

eclosión de una larva del tipo Veliconcha, de

avanzado desarrollo y muy cercana a la meta-

morfosis. El número de especies estudiadas en

Chile es aún muy escaso para analizar este tipo

de relaciones. En las pocas especies de fondo

rocoso que se han estudiado (N. crassilabrum, C.

concholepas y C. crassilabrum) no se observa

una tendencia clara, si bien se cumple la existen-

cia de desarrollo directo para las 2 especies de

alta latitud (T. laciniatus y T. geversianus). A

diferencia de los resultados de Spight (op. cit.),

en los murícidos chilenos de fondo arenoso (7.

chocolata y X. cassidiformis) prevalece un desa-

rrollo con eclosión de larva. puiágicas planc-

totróficas; sin embargo para este tipo de

ambiente hay coincidencia en el hallazgo de una

especie (Ch. giganteus) que también presenta un

desarrollo intermedio con eclosión de larvas muy

avanzadas, estadio que dicho autor denomina

como larva del tipo Veliconcha.

Por su forma ovalada y tipo de pedúnculo,

las ovicápsulas de X. cassidiformis se asemejan a

las de Ch. giganteus (Gallardo, 1981). De acuer-

do a la clasificación propuesta por D'Asaro

(1991), ellas corresponden a cápsulas del tipo

ampuliforme con tapón opercular prominente. El

mismo patrón morfológico se manifiesta en N.

crassilabrum aunque estas últimas presentan un

pedúnculo corto y rígido (Gallardo, 1979a). Entre

los murícidos chilenos, el mayor contraste con

este tipo de morfología lo presentan las ovicápsu-

las de T. geversianus y T. laciniatus (Zaixso,

1973; Penchaszadeh, 1976) descritas por

D” Asaro (1991) como cápsulas de tipo vasiforme

discoidal.

AGRADECIMIENTOS

El presente estudio fue posible gracias a

facilidades y financiamiento parcialmente

obtenidos del Proyecto DID-UACH S91-14 y del

Convenio C90-5 financiado por organizaciones

alemanas (DFG y BMZ) en cooperación con el

Prof. Dr. Klaus Jiirgen Gótting de la Universidad

Justus-Liebig de Giessen.

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FiG. 1. Xanthochorus cassidiformis. Ovipostura adherida sobre concha de adulto mantenido en acuario de laboratorio.

Gayana Zool. 58(1), 1994

25mm

5mm

Fic. 2. Xanthochorus cassidiformis. Cápsulas ovíferas. 2.1, detalle de una cápsula ovífera en vista lateral (A), ven-

tral (B), dorsal (C) y apical (D). 2.2, parte de una ovipostura mostrando el patrón de agregación de las ovicápsulas.

Ovipostura y desarrollo intracapsular de Xanthochorus cassidiformis: GALLARDO, C. S. € K. GONZALEZ

FiG. 3. Xanthochorus cassidiformis. Ovipostura con cápsulas de morfología atípica.

Y=-404,6483,4X

800 PEO

[18

(ad

(E)

(99)

3 600

(e)

2 500

(==)

E 400

> o

3) 0

== o = $

300

10 11 12 13

LONGITUD OVICAPSULA (mm)

ElG. 4. Xanthochorus cassidiformis. Relación entre tamano dongitud) de la cápsula ovífera y el número de embrio-

nes que ella contiene. N: 58.

Gayana Zool. 58(1), 1994

FRECUENCIA (%)

206 219 232 245 258

DIAMETRO HUEVOS (um)

F1G. 5. Xanthochorus cassidiformis. Variación del tamaño del huevo con representación porcentual de frecuencias.

TABLA I. Xanthochorus cassidiformis. Variables del desarrollo intracapsular.

Tipo de variable Rango Prom. y D.S. N

Número de cápsulas por postura 38 - 112 SIMCO e)

Número de embriones por cápsula SL IS ISE MOS 2

Longitud cuerpo ovicapsular (mm) TOSMISS MiS 073 az

Longitud pedúnculo (mm) E ZES SES 72

Tamaño del huevo (um) 206.4 - 258 ZII EOS 150

Tamaño de eclosión (um) 387 - 464 425 x= 16 300

Ovipostura y desarrollo intracapsular de Xanthochorus cassidiformis: GALLARDO, C. S. 8: K. GONZALEZ

Vf,

FIG. 6. Xanthochorus cassidiformis. Uustración de diferentes estadios del desarrollo intracapsular incluyendo algu-

nas etapas de la fase larval libre. Huevo fecundado (A); estadio de trébol (B) y segmentación más avanzada (C);

estadio trocófora (D); prevelíger a velíger temprana (E); velíger mediana (E); velíger de eclosión (F): larva velíger

libre, después de 23 días de cultivo en laboratorio.

Gayana Zool. 58(1), 1994

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Gayana Zool. 58(1): 91-98, 1994

ISSN 0016-531X

NUEVAS ESPECIES DE CERAMBYCIDAE (COLEOPTERA) DE CHILE Y

ALGUNAS SINONIMIAS

NEW SPECIES OF CERAMBYCIDAE (COLEOPTERA) FROM CHILE AND

SOME SYNONYMIES

Juan. E. Barriga T.* y Luis E. Peña G.**

RESUMEN

Se describen tres especies de la Familia Cerambycidae

(Coleoptera) para Chile pertenecientes al género

Callisphyris: C. pepsioides n. sp., C. crassus M. Sp. y

C. ficheti n. sp. Sinonimizan las especies: Planopus

lugubris Prosen de Planopus laniniensis Bosq;

Callisphyris annulatus Phil. de Callisphyris molor-

choides (Guér.); Callisphyris uretai Cerda de

Callisphyris odyneroides Fairm. € Germ.;

Callisphyris vespa Fairm. £ Germ. de Callisphyris

apicicornis Fairm. £ Germ.; Callisphyris auriventris

Cerda de Callisphyris macropus Newm.; Callisphyris

concolor (Fairm. 8 Germ.) y Callisphyris testaceipes

Fairm. £ Germ. de Callisphyris rufiventer (Phil) y se

comentan las sinonimias de Callisphyris leptopus R.

Philippi.

PALABRAS CLAVES: Coleoptera, Cerambycidae,

Callisphyris, Planopus, Sistemática.

INTRODUCCION

El género Callisphyris Newman fue erigido

en 1840 para la especie Callisphyris macropus

Newman, posteriormente se han descrito

numerosas especies, muchas de ellas sólo

basadas en variaciones de colorido de algunos

ejemplares.

Después de estudiar y observar en crianzas

*Depto. de Producción Agrícola, Facultad de Ciencias

Agrarias y Forestales Universidad de Chile, Casilla

1004, Santiago, Chile.

**Instituto de Estudios y Publicaciones “J.I.Molina”,

Scientific Associate in Entomology at the American

Museum of Natural History, N.Y. (USA) - Casilla

2974, Santiago, Chile.

ABSTRACT

Are described three new species of the family

Cerambycidae (Coleoptera) from Chile, belonging to

the genus Callisphyris: C. pepsioides n. sp., C. crassus

n.sp. and C. ficheti n. sp. The species Planopus

lugubris is synonymised to Planopus laniniensis Bosq.

Callisphyris annulatus Phil. of Callisphyris molor-

choides (Guér.); Callisphyris uretai Cerda of

Callisphyris odyneroides Fairm. £ Germ.; Callis-

phyris vespa Fairm. 62 Germ. of Callisphyris apicicor-

nis Fairm. £ Germ.; Callisphyris auriventris Cerda of

Callisphyris macropus Newm.; Callisphyris concolor

(Fairm. £ Germ.) and Callisphyris testaceipes Fairm.

é Germ. of Callisphyris rufiventer (Phil). The authors

comment the synonymies of Callisphyris leptopus R.

Phil.

KeYwokrDs: Coleoptera, Cerambycidae, Callisphyris,

Planopus, Systematic.

algunas de las especies de este género, hemos

encontrado necesario sinonimizar algunas de

ellas por ser sólo variaciones cromáticas, además

hemos comprobado la existencia de tres nuevas

especies del género las cuales pasamos a

describir.

Se ha procedido también a sinonimizar la

especie Planopus lugubris Prosen de Planopus

laniniensis Bosq, por ser solo diferentes sexos de

una misma especie.

MATERIALES Y METODOS

El material estudiado pertenece a las colec-

ciones de los autores, además se estudió material

proveniente de las colecciones de los Srs. T.

Gayana Zool. 58(1), 1994

Eicheti E Curkovic y de la Facultad de

Agronomía de la Universidad de Chile.

En primer lugar se procede a describir tres

nuevas especies del género Callisphyris para

luego proponer nuevas sinonimias.

Abreviaciones usadas: CMNH Carnegie

Museum of Natural History, USA; FMNH Field

Museum of Natural History, USA; JEBC

Colección Juan E. Barriga T., Chile; LEPG.

Colección Luis E. Peña G., Chile; MEUC Museo

de Entomología de la Facultad de Agronomía de

la Universidad de Chile, Chile; MNNC Museo

Nacional de Historia Natural de Santiago, Chile;

MZSP, Museo de Zoología de la Universidad de

Sao Paulo, Brasil; MZUC Museo de Zoología de

la Universidad de Concepción, Chile; TCCC

Colección Tomislav Curkovic, Chile; TFCC,

Colección Thomas Fichet, Chile y CJLH,

Colección José L. Henríquez.

1. DESCRIPCION DE NUEVAS ESPECIES

Callisphyris pepsioides sp. n.

(Fig. 2)

DIAGNOSIS: Cuerpo y patas aterciopeladas

con pilosidad larga intercalada; élitros negros con

reflejos azules y pubescencia negra muy corta;

antenas glabras, leonadas oscureciéndose hacia el

ápice, siendo los segmentos distales negros;

abdomen y patas negras ligeramente brillantes.

Tórax grueso, subcilindrico.

HoLOorTIPO o : largo 17.4 mm, ancho humeral:

4.5 mm.

CABEZA: con puntuaciones gruesas y rugosl-

dades, escavada en la frente entre los tubérculos

antenarios que son prominentes; ojos con granu-

losidad fina, omatidios pequeños; antenas fili-

formes, con los antenitos engrosados hacia el

ápice tocando el último segmento abdominal; 1*,

3” y 4” antenitos subcónicos, desde el 5” hasta el

119, cilíndricos, 1* al 3” semi brillantes y el resto

opacos, 3” al 8” lateralmente oscurecidos, 9” al

11* negros.

PROTORAX: subcuadrangular, estrechado

anteriormente, convexo; superficie rugosa, con

pilosidad tupida; borde anterior, ligeramente

levantado; tubérculos laterales débilmente insinu-

ados.

Mesosterno y Metasterno rugosos, con

pubescencia rala.

ELrrros: ensanchados en la base, siendo más

anchos que el pronoto, con el área humeral muy

marcada y elevada; retrayéndose después del

primer tercio, y transformándose en una lengiieta

estrecha, y ligeramente curvada hacia afuera y

espatulada en su ápice, tocando el 5” esternito;

superficie rugosa subglabra; color negro con brillo

acerado; alas ahumadas.

Patas: delgadas, con rugosidad tenue; con

pilosidad fina y oscura. Protorácicas y mesotorá-

cicas con el primer tarsito tan largo como el 2” y

3” reunidos; fémur ligeramente globoso y aplana-

do lateralmente. Las metatorácicas con el fémur

aplanado lateralmente y curvado hacia adentro,

tibias delgadas y aplanadas lateralmente con el

primer tarsito más largo que el resto.

ABDOMEN: ancho y dorsoventralmente delga-

do y cóncavo, segmentos semejantes entre sí,

cortos, de superficie rugosa, pilosidad corta y

rala; 1* ligeramente más largo.

ALOTIPO : largo 18.5 mm ancho humeral 4.5

mm. semejante al macho, antenas alcanzando el

3” segmento abdominal; siendo sus segmentos

leonados y engrosados, útimo antenito oscuro.

LOCALIDAD TIPO: Parque del Inglés (El

Radal), prov. Curicó, Chile.

Tiros: Holotipo, Alotipo y 9 paratipos (3 o y

6 0) de la localidad tipo del 10-X-93 y 15 parati-

pos del 26-IX-93, todos leg. Juan E. Barriga T.

ex. Berberis chilensis Gill. et. Hook.

(Berberidaceae); 2 paratipos o del 25-X-92 y 1 o

del 29-XI-92 de Radal 7 Tazas, prov. Curicó, leg.

J. E. Barriga, ex B. chilensis.; 2 o del 13-X-93 y 1

o del 11-X-93 todos de El Radal, Molina leg.

Thomas Fichet; 1 o del 9-XII-88 y 1 o del 16-X-

91 de Alto Vilches, Talca, leg. Thomas Fichet; 1

o 18-XI-90, 1 o del X-91, 1 o del XI-91 y lo del

29-XI-92 todos de Alto de Vilches, prov. Talca,

leg. J.E. Barriga, ex Berberis darwini Hook

(Berberidaceae); 1 o del 13-X-90 de Alto

Vilches, Talca, leg. T. Curkovic, ex Berberis sp.;

1 o del 3-XI-90 de Radal, Curicó, leg. T.

Curkovic, ex Berberis sp.; 1 ej. 1-XI-90 Radal,

Curicó, leg. J. L. Henríquez, ex Berberis chilen-

sis; 1 o de la Goyana, W. Graneros, 1700m. XI--

81 leg. M. Marín A.

UBICACION DE LOS TIPOS: Holotipo y 1

paratipo (MNNC), 1 paratipo (FMNH), 7 parati-

pos en (LEPG), Alotipo y 18 paratipos en

(JEBC), 3 paratipos en (MZUC), 2 paratipos

Nuevas especies de Cerambycidae (Coleoptera) de Chile y algunas sinonimias: BarrIGa, J.E. € L.E. Peña

(MZSP), 1 paratipo (MACN), 2 paratipos en

(TFCC), 1 paratipo en (TCCC), 2 paratipos en el

(CMNH), 1 paratipo en (MEUC) y 1 paratipo en

(CJLH).

COMENTARIO: Se diferencia del resto de las

especies del género por la coloración negra y

negro acerado, y por su similitud a himenópteros

pompílidos. Salvo las antenas no hay diferencias

notorias entre sexos. En cuanto a caracteres mor-

fológicos se asemeja a C. crassus Sp. nov., siendo

menos ancha que esta última y diferiendo en el

último antenito de las o.

NOMINACION: Se le dió el nombre de pep-

sioides, por su semejanza a los Hymenópteros del

género Pepsis (Pompilidae), con los cuales se

confunde en vuelo.

Callisphyris crassus sp.n.

(Figs. 2 y 3)

DIAGNOSIS: Cuerpo ancho, aterciopelado

negro, pubescente; antenas anaranjadas opacas

con los últimos antenitos negros, élitros más

anchos que el cuerpo adelgazándose abrupta-

mente en el 1? tercio, testáceos con pubescencia

dorada muy corta, patas testáceas con los tarsitos

Negros.

HoLoriro o : largo: 16.5 mm, ancho hume-

ral: 4.9 mm.

CABEZA rugosa, profundamente escavada en

la frente, entre los tubérculos antenarios que son

prominentes; ojos finamente facetados con los

omatídeos pequeños; antenas filiformes de once

segmentos, estiradas hacia atrás tocan el ápice

del 4” segmento abdominal; 1” antenito subcóni-

co, desde el 5” al 10 subcilíndricos, cuneados en

el ápice, color leonado, 8” segmento lado interior

negro, los 3 últimos negros. Epistoma y labro

finamente puntuado; epistoma, labro, palpos y

mandíbulas brillantes. :

PROTORAX: subcilíndrico, estrechado ante-

riormente, convexo; superficie rugosa, cubierto

de pubescencia negra, borde anterior levantado

con 2 insinuaciones de tubérculo a cada lado.

ELITROS: más anchos que el pronoto, con los

ángulos humerales muy marcados; retrayéndose

después del primer tercio, transformándose en

una lengiieta estrecha y ligeramente espatulada

en su ápice, alcanzando el 4” esternito; superficie

lisa cubierta de una ligera pubescencia dorada;

alas ahumadas con la base y las venas principales

testáceas. Base y extremo del élitro leonado, el

resto ahumado.

Paras: delgadas, con puntuación fina y tupi-

da; pilosidad fina y dorada, con pelos largos,

finos e intercalados; trocanter, extremo apical de

la tibia y tarsos negros, resto leonado; primer tar-

sito más largo que el 2” y 3* reunidos.

Mesosterno y metasterno puntuados, con

pubescencia suave.

ABDOMEN: segmentos subiguales y cortos,

pilosidad corta, alargándose hacia el ápice.

ALOTIPO O : largo 20 mm, ancho humeral 6

mm. Semejante al macho, antenas con segmentos

más engrosados llegando hasta 2” segmento

abdominal, 11% segmento con una insinuación de

división en su ápice.

LocALIDAD TIPO: Aysen, Chile.

Tiros: Holotipo y un Paratipo o de la locali-

dad típica colectado el 8-XII-1985 leg. L. E.

Peña. Alotipo; Las Trancas Chillán Chile 19-II-

87 leg. L.E. Peña; paratipo o Las Trancas, Ñuble

[1-93 leg. José V. Escobar.

UBICACION DE Los Tipos: Holotipo: MNNC;

Alotipo: LEPG; Paratipo o en JEBC; Paratipo o

en la MZUC.

COMENTARIO: Especie semejante a la anterior

(C. pepsioides n. sp.) de la cual se diferencia por

ser más robusta, el último segmento antenal de

las o y el colorido. En colorido se parece a

Callisphyris apicicornis Fairm. et Germ., con la

pubescencia del tercer par de patas ausente.

NOMINACION: crassus (del latín grueso, cor-

pulento)

Callisphyris ficheti n. sp.

(Figs. 1, 4 y 5)

DIAGNOSIS: Cuerpo alargado, negro: pilosi-

dad negra, pubescencia larga y suberguida dora-

da muy fina y rala, siendo abundante y

decumbente en el borde anterior y posterior del

pronoto; borde del mesosterno y borde posterior

del 2” y 3” tergito abdominal, destacándose su

colorido amarillo oro; antenas con los cuatro

primeros antenitos leonados oscureciéndose

hacia el ápice; élitros y patas testáceas, con los

tarsos negros.

HoLoriro o : largo: 15.5 mm, ancho humeral

4.0 mm.

CABEZA finamente puntuada, profundamente

Gayana Zool. 58(1), 1994

escavada en la frente entre los tubérculos ante-

narios que son prominentes. Epistoma, labro,

mandíbulas y palpos brillantes. Frente con los

márgenes notables con forma de quilla, que nace

en la base de la antena y termina en la mandíbula

y la separa de las mejillas, que son fuertemente

puntuadas. Ojos reniformes con los omatidios

muy pequeños. Antenas filiformes sobrepasando

con el ápice al 4” segmento abdominal; 1” segmen-

to subcónico, 3” y 4” cilíndrico, 5” al 11” aquilla-

dos, cuneados en el ápice, del 7” al 11 con una

pequeña quilla transversal en su mitad externa.

PROTORAX: subcuadrangular, estrechado

anteriormente, ligeramente convexo; superficie

con puntuación fina cubierta de pubescencia

suave y rala, con una banda anterior de pelos

dorados decumbentes dirigidos hacia atrás

abrazando la base anterior, esta banda aparece en

el borde posterior cuyos pelos se dirigen hacia

adelante, depresión longitudinal amplia, lados

con tubérculo notable y romo

MESOSTERNO: superficie con puntuación fina

y tupida, hendido longitudinalmente en su parte

media; hacia la zona apical lateral con una banda

de pelos dorados, decumbentes y dirigidos hacia

atrás.

METASTERNO: con sus epipleuras brillantes y

puntuadas

ABDOMEN: 1” segmento angosto y cónico

más largo que los demás, ensanchándose hasta el

5” que posáe el ápice ampliamente redondeado;

pilosidad corta profusa y decumbente, difícil de

percibir en su totalidad y con pelos dorados, dis-

persos y suberguidos; borde posterior del 2* y 3"

esternitos con banda de pelos dorados decum-

bentes dirigidos hacia atrás; borde anterior de

todos los tergitos con una banda de pelos decum-

bentes dorados, dirigidos hacia atrás.

Paras: delgadas, puntuación fina y tupida;

con pilosidad fina y dorada; patas protorácicas y

mesotorácicas con el primer tarsito de la mitad de

largo que el resto reunido, patas metatorácicas

con el primer tarsito ligeramente más corto que el

resto reunidos.

ELrrros: más anchos que el protórax, con los

ángulos humerales muy marcados; retrayéndose

abruptamente después del primer tercio, transfor-

mándose en una cinta estrecha y ligeramente

espatulada en su ápice, sobrepasando el 2” ester-

nito; superficie lisa con algunos puntos finos

repartidos y cubierta de una suave pubescencia

dorada; alas ahumadas con la base y las venas

principales testáceas.

ALOTIPO O : largo: 19.2 mm, ancho humeral

4.4 mm; semejante al macho, teniendo las ante-

nas más cortas.

LocaALIDAD Tipo: Quintero prov. Valparaíso,

Chile. ;

Tiros: Holotipo, Alotipo y 17 Paratipos de

la localidad típica y de las siguientes fechas:

Holotipo 22-XI-92; Alotipo del 10-XII-90;

paratipos: 1 o del 4-XI-90, 2 o y 3 o del 5-XI-90 ,

1 o del 6-XI-90, 1 o del 7-X1-1990, 1 o y 1 o del

8- XI-90, 1 o y 1 o del 10-XI-93, 1 o y 1 o del

10-XII-92, 1 o del 15-XI1-92, 1 o del 2-1-93 y 1 o

del 9-1-91, todos obtenidos de raíces de

Myoschilos oblonga Ruiz et Pavón (Santalaceae),

por el Sr. Thomas Fichet.

UBICACION DE TIPOS: Holotipo y 2 Paratipos

en el MNNC, Alotipo y 3 paratipos en JEBC. 1

paratipo en el FMNH; 2 en la colección LEPG; 2

en la MZUC; 2 en el MZSP; 2 en la colección

TFCC , 1 en el CMNH, 1 en el MEUC y 1 en la

colección de TCCC.

COMENTARIO: Esta especie es semejante a C.

odyneroides Fairm. et Germ. y C. fritzi Cerda. Se

separa de la primera por tener los segmentos

antenales alargados y no engrosados y subcilín-

dricos y la puntuación del pronoto mucho más

fina. Se aparta de la segunda por tener esta última

el protórax subcilíndrico y las bandas doradas del

doble de ancho. C. odyneroides y C. ficheti imi-

tan a algunas avispas del género Hypodynerus y

C. fritzi aparentemente a ciertos dípteros de la

familia Mydidae.

NOMINACION: Dedicamos esta especie al Sr.

Thomas Fichet quien nos ha colaborado con

todos los ejemplares hasta ahora conocidos

2. NUEVAS SINONIMIAS

Planopus laniniensis Bosq 1953

= Planopus lugubris Prosen 1963 Syn.n.

Durante muchos años de coleccionar y de

observar ejemplares del género Planopus Bosq,

nunca encontramos machos de la especie

Planopus laniniensis Bosq, ni hembras de la

especie P. lugubris Prosen lo que nos indujo a

estudiar las numerosas series que poseemos de

Nuevas especies de Cerambycidae (Coleoptera) de Chile y algunas sinonimias: BARRIGA, J.E. € L.E. Peña

dichos insectos incluyendo las numerosas obser-

vaciones en su hábitat, llegando a la conclusión

que P. lugubris es sinónimo de P. laniniensis.

Las características de ambas especies son sola-

mente caracteres de ambos sexos. Según nuestras

observaciones de campo siempre hemos encon-

trado a ambas especies en el mismo hábitat y sus

larvas horadando la madera viva de Nothofagus

dombeyi (Mirb.) Oerst., donde las hemos encon-

trado conviviendo.

Los machos son muy estables en tamaño y

colorido, a diferencia de las hembras que tienen

una gran variabilidad de tamaño, y en ellas en

colorido no existe un patrón respecto a las áreas

rojizas y oscuras del cuerpo, en especial del pro-

tórax, variando del rojizo completo en algunos

ejemplares y en otros con fondo rojizo y bandas

oscuras de grosor variable, por lo que es fácil de

producir confusión.

En la descripción de Bosq se señala que

hembras y machos tienen las antenas más cortas

que el cuerpo, lo que significa que evidentemente

se trata de hembras. Cerda 1968 señala con

extrañeza esta misma suposición. Por todos estos

motivos consideramos necesario sinonimizar P.

lugubris de P. laniniensis.

Callisphyris molorchoides (Guér 1838)

= Callisphyris annulatus (Phil. R.1864) Syn.n.

Después de numerosas crianzas de

Callisphyris molorchoides, hemos comprobado

que los ejemplares machos concuerdan con la

descripción de Callisphyris annulatus. Los estu-

dios realizados sobre la biología de esta especie

fueron publicados por Barriga y Fichet (1991),

dejándose para una nota posterior el paso a

sinonimia de C. annulatus .

Las larvas fueron obtenidas de ocho

especies de plantas de la familia Rhamnaceae de

diversas localidades de Chile, encontrándose que

la mayor parte de los machos corresponden a la

especie descrita por R. Philippi. Además se

encontraron ejemplares tanto machos como hem-

bras melánicos en las localidades más boreales

como Farellones (Santiago) y Guardia Vieja (Los

Andes) Chile.

Callisphyris odyneroides, Fairm. £ Germain

(1864)

= Callisphyris uretai Cerda 1963, Syn.n.

Después de analizar los ejemplares

obtenidos de numerosas crianzas se ha podido

comprobar que C. uretai se trataría de ejemplares

cuyas bandas doradas o plateadas estarían

oscurecidas o ausentes, además después de com-

parar el tipo de esta especie (C. uretai ) y el resto

de la serie tipo, se ha podido comprobar feha-

cientemente lo que hemos propuesto. La especie

en referencia se alimenta de raíces de Berberis

empetrifolia Lam. (Barriga et al. 1993).

Callisphyris rufiventer (R. Phil.1859)

= Callisphyris concolor (Fairm. $: Germ. 1861)

Syn.n.

= Callisphyris testaceipes Fairm. £ Germ. 1864

Syn.n.

= Callisphyris asphaltinus (Fairm. € Germ.

1859)

Como resultado del estudio de una

numerosa serie de ejemplares correspondientes a

todas las supuestas especies, se comprobó que

solo se trataría de variaciones cromáticas de la

especie C. rufiventer. Por este motivo hemos

resuelto pasar a sinonimia las especies C. conco-

lor y C. testaceipes. Las larvas se desarrollan en

Nothofagus dombeyi (Mirb.) Oerst. (Barriga ef

al. 1993) y en Drymis winteri Forst (Ernesto

Krahmer, comunicación personal), de las cuales

se han criado ejemplares de todas las gamas de

color entre el rojo y el negro. No se ha encontra-

do diferencias morfológicas que pudieran justi-

ficar la validez de estas especies. Se ha tomado el

criterio utilizado por C.A. Dohrn (1860) y por

Carlos Bruch (1918) dando prioridad al nombre

utilizado por Philippi (1859) de C. rufiventer, y

no el utilizado por Fairm. £ Germ. (18539) (C.

asphaltinus)

Callisphyris leptopus R. Phil. 1859.

= Callisphyris semicaligatus Fairm. € Germ.

1859

= Callisphyris schytei F.Phil. 1862

Utilizando el criterio seguido en la especie

anterior, el nombre utilizado por Philippi (1859)

tendría prioridad sobre el utilizado por Fairmaire

$ Germain (1859). La especie C. schytei fue

pasada a sinonimia por Blackwelder (1946), lo

que hemos podido comprobar luego de ver una

numerosa serie proveniente de la zona austral

Gayana Zool. 58(1), 1994

(Magallanes). Este nombre ha seguido siendo uti-

lizado en la literatura por lo que aquí confir-

mamos lo expuesto por Blackwelder.

Callisphyris apicicornis Fairm. 82 Germ. 1859

=Callisphyris vespa Fairm. 82 Germ. 1861, Syn.n.

Frecuentemente se utiliza el nombre de C.

vespa, el cual sólo sería un sinónimo de C. apici-

cornis. Todos los ejemplares vistos concuerdan

en sus caracteres con las descripciones de ambas

especies por lo que C. apicicornis tendría priori-

dad sobre C. vespa. Los estudios y observaciones

hechos en el laboratorio y en terreno comprueban

claramente lo propuesto. Estos se han basado en

crianzas masivas de larvas obtenidas de diversos

puntos de la distribución de las especies descritas

y que ahora tratamos y que abarca gran parte de

la zona central de Chile. La localidad típica de C.

apicicornis es Santiago y la de C. vespa es

Chillán, no encontrando diferencia alguna entre

las poblaciones estudiadas. La. piautas alimenti-

cias han sido citadas por Barriga et al. (1993).

Callisphyris macropus Newman 1840

= Callisphyris auriventris Cerda 1993 Syn.n.

Nuestros trabajos de crianzas de larvas de

los diversos lugares de la zona sur en los cuales

habita la especie de Newman nos ha propor-

cionado multitud de diferencias , que hemos con-

siderado sin mayor importancia, como es el

colorido, mayor o menor pilosidad, no encontran-

do caracteres que podrían ser válidos para acep-

tar ciertas proposiciones, que a nuestro juicio no

pueden validar una especie. El caso al que nos

referimos ahora es claro en este aspecto, pues la

descripción de la especie C. aurivenris se basa

justamente en los caracteros expuestos.

Manifestamos que estos caracteres también

aparecen frecuentemente y con muchas varia-

ciones en las series de ejemplares que hemos -

logrado obtener de nuestras crianzas.

AGRADECIMIENTOS

Los autores expresan su agradecimiento a

las siguientes personas que han colaborado en

este estudio: Srs. Thomas Fichet, Tomislav

Curkovic, J. Luis Henríquez y Jorge Macaya.

BIBLIOGRAFIA

. BARRIGA J. E., T. Curkovic, T. FicHer, J.L. HENRIQUEZ

8 J. Macaya, 1993. Nuevos antecedentes de

coleópteros xilófagos y plantas hospederas en

Chile con una recopilación de citas previas. Rev.

Chilena Ent. 20:65-91.

BARRIGA J.E. € T. FicHeT. 1991. Observaciones

biológicas sobre Callisphyris molorchoides

(Guér., 1838) (Coleoptera: Cerambycidae). Rev.

Chilena Ent. 19:65-69.

BLACKWELDER, R. E. 1946. Checklist of the coleopte-

rous insects of Mexico, Central America, West

Indies, and South America. U.S. Natl. Mus. Bull.

185 (4):574.

Bruc, C. 1918. Cerambícidos argentinos nuevos o

poco conocidos. Rev. Mus. de la Plata 24 (2):7-29.

CERDA, M. 1968 Nuevos cerambícidos chilenos

(Coleoptera-Creambycidae). Rev. Chilena Ent.

6:101-107.

DorHn, C.A. 1860. Nachschrift der redaction. Stett.

Ent. Zeit. 21:251-252

FAIRMARE, L. 62 GERMAIN, P. 1859. Revision des

coléoptéres du Chili. Ann. Soc. Ent. France

(Ser.3) 7:483-532.

PhiLipPI, R. 1859. Algunas observaciones generales

sobre insectos de Chile. An. Univ. Chile 16:656-

678.

Nuevas especies de Cerambycidae (Coleoptera) de Chile y algunas sinonimias: BARRIGA, J.E. 8; L.E. Peña

Fis. 1-5. Callisphyris ficheti sp. nov.: Fig. 1. Antena del macho; Fig. 4. Protórax; Fig. 5. Cuarto terguito;

Callisphyris crassus sp. nov. y Callisphyris pepsivides sp. nov.: Fig. 2. Antena de la hembra; C allisphyris crassus

sp. nov.: Fig. 3. Detalle del último segmento antenal de la hembra (Escala: línea 1 mm).

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ZOOLOGIA

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punto y coma] y nunca antes del signo ortográfico. La única excepción a esta regla se aplica en las

iniciales del autor en la bibliografía y en las citas en el trabajo.

Párrafos. Los párrafos deben ir sin sangría, justificados y sin espacio entre un párrafo y otro.

En lo posible evite las palabras subrayadas, si desea destacar algo utilice negrita. Destine los caracteres

cursiva para los nombres científicos o palabras latinas, incluso si se escriben en mayúsculas. Cuando

encabezan un párrafo deben ir en negrita cursiva.

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Comillas. Sólo usar doble comillas (** ”), no usar otro signo simlar o equivalente.

Letras griegas. No incluir letras griegas en el texto ni provenientes del teclado ni manuscritas. En su

lugar escribir el nombre de la letra (ejemplo: alfa), en la impresión definitiva aparecerá el caracter

griego.

Macho y Hembra: para indicar, en Material Examinado, los símbolos macho y hembra, estós deben

escribirse (macho,hembra), en la impresión definitiva aparecerá el símbolo correspondiente.

Bibliografía. Los nombres de los autores deben ir en altas y bajas. Coloque un punto antes y después del

año de publicación. (Ejemplo: Smith, J.G., A.K. Collins. 1983.). No use sangrías. Para las referencias

que son volúmenes no use espacio después de dos puntos, ejemplo: Rev. Biol. Mar 4(1):284-295.

Tablas. Reducir al máximo el uso de talas o cuadros complicados o dificiles de componer. No usar

espacios para separar una columna de otra en las tablas, para ello usar exclusivamente tabuladores. No

se aceptarán trabajos que contengan tablas confeccionadas con espaciador.

Los manuscritos que no cumplan con esta reglamentación serán devueltos a sus autores para su

corrección antes de incorporarlos al proceso de revisión.

Valor de impresión:

El valor de la publicación es de US$ 20.00 por página (con láminas en blanco y negro) y de US$ 35.00

por página (con láminas en color).

El Director de la Revista considerará la exención total o parcial del valor de publicación para

manuscritos no originados en proyectos de investigación.