NIBALDO BAHAMONDE N.

Universidad de Chile, Chile.

ARIEL CASAMOUSSEIGHT

FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES

Y OCEANOGRAFICAS

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

CHILE

DIRECTOR DE LA REVISTA

Andrés O. Angulo

REEMPLAZANTE DEL DIRECTOR

Oscar Matthei J.

REPRESENTANTE LEGAL

Augusto Parra Muñoz

PROPIETARIO

Universidad de Concepción

DOMICILIO LEGAL

Víctor Lamas 1290, Concepción, Chile

EDITOR EJECUTIVO SERIE ZOOLOGIA

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COMITE ASESOR TECNICO

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Universidad de Concepción, Chile.

NELSON PAPAVERO

Museo Nacional de Historia Natural, Chile. Universidade de Sáo Paulo, Brasil.

RurTH DESQUEYROUX-FAUNDEZ GERMAN PEQUEÑO R.

Muséum d Histoire Naturelle, Suiza. Universidad Austral de Chile, Chile

RAMON Formas C. LINDA M. PITKIN

Universidad Austral de Chile, Chile. British Museum (Natural History), Inglaterra.

CArLos G. JARA

MARCO A. RETAMAL

Universidad Austral de Chile, Chile. Universidad de Concepción, Chile.

ALBERTO P. LARRAIN

JAIME SOLERVICENS

Universidad de Concepción, Chile. Universidad Metropolitana de Ciencias de la

JUAN LOPEZ GAPPA

Educación, Chile.

Museo Argentino de Ciencias Naturales RauL SorTo

“Bernardino Rivadavia”, Argentina. Universidad Arturo Prat, Chile.

MARIA L. MORAZA HAROLDO Toro

Universidad de Navarra, España. Universidad Católica de Valparaíso, Chile.

JoEL MINET W. CALVIN WELBOURN

Muséum National d' Histoire Naturelle, Francia. The Ohio State University, U.S.A.

Indexado en Bulletin Signaletique (Abstract, CNRS, Francia), Pascal Folio (Abstract, CNRS, Francia); Periodica (Index Latinoamericano, México);

Marine Sciences Contents Tables (MSCT, Index FAO); Biological Abstract (BIOSIS);Entomology Abstract (BIOSIS); Zoological Records (B1O-

SIS); Ulrik's International Periodical Directory; Biological Abstract.

Diagramación

Débora Cartes S.

ISSN 0016-531X

CANANA LOODINOGIA

VOLUMEN 59 NUMERO 1 1995

CONTENTS

JEREZ R., VIVIANE. Stenomela pallida Erichson, 1847. Redescripción,

Ontogeny and affinities with genus Hornius (Chrysomelidae-Eumol-

A A 1

JARA, C. G., M. CERDA « A. PALMA. Geographic range of Aegla pa-

pudo Schmitt, 1942 (Crustacea: Decapoda: Anomura: Aeglidae), and

conservational status Of 1ts pOpulatiONS....ooooonncccnncccnooccccononcooccnconnnonos 13

ZAPATA M., J., C. ZAPATA V. Y A. GUTIERREZ M. Recent benthic fo-

RAE ron Util as 23

HormMazaBaL, M.E. £ M.E. NavarRo. Description of egg, first state

larvae and genitalia of Adetomeris microphthalma (PH.) (Lepidopte-

OSA A A A ee 41

ALAY, F., H. Campos, J. GAvILAN, F. GONZALEZ, C. VALENZUELA,

P.M. BisoL « J. CABELLO. Genetic characterization of aquatic orga-

nism from the Biobio Region, Chile. A contribution to its biodiversity

O o e o hs conc 47

LARRAIN P., ALBERTO. Biodiversity in Chilean echinoderms: State of

HejartrandiblOsy sitemas aS

ARTIGAS, J. N. € N. PAPAVERO. The american genera of asilidae (Dip-

tera): Keys for identification with an atlas of female spermathecae and

other morphological details. IX. 3. Subfamily Asilinae Leach-Eichoi-

chemus-group, with the proposal of the new genera and a catalogue of

eMe mopical species scooter mds 97

SmirH, D. R. € V. Perez D'A. Systematic list and bibliography of

the sessiliventri sawflies (Hymenoptera: Symphyta) from Chile.....103

JNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

ISSN 0016-:

CAMVÍÉNA LODLOGIA

VOLUMEN 59 NUMERO 1 1

CONTENIDO

JEREZ R., VIVIANE. Stenomela pallida Erichson, 1847. Redescripción,

Ontogenia y afinidad con el género Hornius (Chrysomelidae-Eumol-

A O A A A A o ooo cdagocodo l

JARA, C. G., M. CERDA € A. PaLmMa. Distribución geográfica de Ae-

gla papudo Schmitt, 1942 (Crustacea: Decapoda: Anomura:Aeglidae)

y estado de conservación de sus poblana 13

ZAPATA M., J., C. ZAPATA V. Y A. GUTIERREZ M. Foraminíferos ben-

tOmicos recientes delisurds Cl TA 23

HormazaBaL, M.E. 8% M.E. NAvaRRo. Descripción del huevo, larva

en primer estadio y genitalia de Adetomeris microphthalma (Ph.) (Le-

Pia O a cccc ooo a ea 41

ALAY, F., H. Campos, J. GAvILAN, F. GONZALEZ, C. VALENZUELA,

P.M. BisoL « J. CABELLO. Características genéticas de recursos acuá-

ticos de la Octava Región del Biobío, Chile. Contribución a la conser-

vación de la biodiversidad sastre ce: NES E 47

LARRAIN P., ALBERTO. Biodiversidad de Equinodermos chilenos: esta-

do actual del conocimiento y sinopsis biosisteMátiCa....oononcnncnnnnncn... E

ARTIGAS, J. N. € N. PAPAVERO. Los géneros americanos de Asilidae

(Diptera): claves para su identificación con un atlas de las espermate-

cas de las hembras y otros detalles morfológicos. IX. 3 Subfamilia

Asilinae leach-grupo-Eichoichemus, con la proposicion de dos géne-

ros nuevos y un catálogo de las especies neotropica-

SmITH, D. R. % V. Perez D'A. Elenco sistemático y bibliografía de

las avispas sesiliventres (Hymenoptera: Symphyta) de Chile.......... 103

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION-CHILE

“Los infinitos seres naturales no podrán perfectamente conocerse

sino luego que los sabios del país hagan un especial estudio de

ellos”.

CLAUDIO GAY, Hist. de Chile, 1:14 (1848)

Portada: Aegla papudo, macho.

(Ver fig. 1, pág. 18).

ESTA REVISTA SE TERMINO DE IMPRIMIR

EN LOS TALLERES DE IMPRESOS ANDALIEN

CONCEPCION, CHILE,

EN EL MES DE JUNIO DE 1995,

LA QUE SOLO ACTUA COMO IMPRESORA

PARA EDICIONES UNIVERSIDAD DE CONCEPCION

]

Gayana Zool. 59(1): 1-12, 1995,

ISSN 0016-531X

STENOMELA PALLIDA ERICHSON, 1847. REDESCRIPCION,

ONTOGENIA Y AFINIDAD CON EL GENERO HORNIUS

(CHRYSOMELIDAE-EUMOLPINAE)*

STENOMELA PALLIDA ERICHSON, 1847. REDESCRIPTION,

ONTOGENY AND AFFINITIES WITH GENUS HORNIUS

(CHRYSOMELIDAE-EUMOLPINAE)

Viviane Jerez R.**

RESUMEN

Para Stenomela pallida Erichson 1847, componente

habitual de los bosques de Myrtaceae de Chile central,

se dan a conocer nuevos caracteres del estado adulto,

se describen los estados de huevo y larva y se entregan

antecedentes bionómicos y distribucionales de la espe-

cie. En base a la comparación morfológica y bionómi-

ca de los estados ontogenéticos de Stenomela pallida

“con el género Hornius (Fairm., 1885) se llega a la con-

clusión que ambos taxa presentan extremada similitud

entre ellos, lo que sugiere afinidad filogenética.

PALABRAS CLAVES: Chrysomelidae, Eumolpinae, Steno-

mela pallida, Hornius, Myrtaceae, morfología, ontoge-

nia, distribución, Neotropical.

INTRODUCCION

La subfamilia Eumolpinae constituye una

unidad morfológica y biológica, concordante con

características larvarias como son la ausencia de

ocelos, hábitos endógeos y alimentación rizofágl-

ca (Jolivet,1988). Refuerzan esta cohesión, as-

pectos morfológicos de los imagos como son la

venación alar (Jolivet, 1957; Suzuki,1970 ), geni-

talia masculina (Bechyné y Springlová de Bechy-

*Financiado por Proyecto DIUC N* 933831-1.

**Departamento de Zoología, Facultad de Ciencias

Naturales y Oceanográficas, Universidad de Concep-

ción. Casilla 2407, Concepción, Chile.

ABSTRACT

For Stenomela pallida Erichson 1847 associated with

Myrtaceae forests of Central Chile, new characters of

adult were studied. The egg and larvae are described.

Additionally, bionomics features and distributional

ranges of species are given. As the basis of morpholo-

gic and bionomic comparison of ontogenetic states of

Stenomela pallida with genus Hornius (Fairm. 1885),

the phylogenetic relationships are concluded.

KeYworDs: Chrysomelidae, Eumolpinae, Stenomela

pallida, Hornius, Myrtaceae, morphology, ontogeny.

distribution, Neotropical.

né,1969; Chen, 1985) y genitalia femenina (Ka-

sap y Crowson, 1980).

En la clasificación de esta subfamilia, tanto

el género Hornius Fairmaire (1885) como el gé-

nero Stenomela Erichson (1847) han sido consi-

derados taxa enigmáticos, relictuales, que

habrían conservado una gran parte de los caracte-

res originales y seguido una especialización par-

ticular e independiente del resto de los

Eumolpinae sudamericanos (Monrós, 1958).

Jerez e Ibarra-Vidal (1992) en base a estu-

dios morfológicos y bionómicos en la ontogenia

de Hornius grandis, determinan que las larvas de

esta especie difieren bastante del patrón morftoló-

gico descrito para los Eumolpinae (Jolivet, 1988)

ya que presentan una gran semejanza con la larva

de primer estadio descrita por Mann y Crowson

(1981) para Orsodacninae. En relación a sus

plantas hospedadoras, el género Hornius se ha

Gayana Zool. 59(1), 1995.

especializado sobre Nothofagus de la región an-

dinopatagónica, siguiendo la distribución de estas

plantas (Monrós, 1952).

En el caso particular del género monotípico

Stenomela para el cual se ha creado la tribu Ste-

nomelini, sólo se conocen algunos antecedentes

morfológicos y distribucionales de los imagos

(Monrós, 1958), desconociéndose aspectos onto-

genéticos y biológicos que puedan contribuir a

definir la posición sistemática de este taxón y sus

reales vinculaciones con el género Hornius.

En bosques pantanosos de canelo y mirtá-

ceas presentes en la depresión intermedia de Chi-

le, Stenomela pallida se cuenta entre las especies

exclusivas de coleópteros fitófagos descritos para

este tipo de comunidades (Solervicens et al.,

1992). Estos bosques tienen una distribución am-

plia pero fragmentada a lo largo de la Cordillera

de la Costa de Chile y ocupan hondonadas con

mayor humedad edáfica y riberas de cursos de

agua. (San Martín et al., 1988).

En sectores donde hay un anegamiento pro-

longado durante todo el año, es factible la pre-

sencia masiva de Blepharocalyx crukshanksii

(temu), acompañada de Luma chequen, arbusto

típico de pantanos y Luma apiculata (San Martín

et al. 1988); esta asociación se presenta en el sec-

tor de Escuadrón, Concepción (367 56' lat S),

VIII Región de Chile, localidad en la cual ha sido

factible detectar a Stenomela pallida, lo que ha

hecho posible contar con una serie grande de

ejemplares y al mismo tiempo hacer observacio-

nes sobre su ciclo biológico.

El presente trabajo tiene por objeto entregar

información sistemática y biológica actualizada

para el estado adulto de Stenomela pallida y al

mismo tiempo dar a conocer sus estados preima-

ginales, algunos aspectos inéditos de su ciclo de

vida y ampliar el rango de distribución. El cono-

cimiento de sus relaciones tróficas y estados on-

togenéticos por otra parte, contribuirán a

dilucidar la posición sistemática de esta especie y

sus relaciones filogenéticas con el género

Horntus.

MATERIALES Y METODOS

Las descripciones de Blanchard (1851), Phi-

lippi (1903) y Monrós (1958) para el estado adul-

to son complementadas con observaciones de la

genitalia femenina, metaendosternito y setas tar-

sales a microscopía electrónica de barrido me-

diante un ETEC Autoscann Ul de la Universidad

de Concepción. Para el estudio de la genitalia fe-

menina se utilizó la morfología básica descrita

para Eumolpinae por Suzuki (1988) y para la ge-

nitalia masculina la descrita por Bechyné y

Springlová de Bechyné (1969) y Chen (1985).

Para la descripción del metaendosternito se utili-

za la nomenclatura propuesta por Crowson,

(1946) y la pilosidad tarsal es analizada según

Mann y Crowson (1981).

Género Stenomela

Stenomela Erichson, 1847: 159; Stal, 1865: 287;

Chapuis, 1874: 421; Brethes, 1928:

205;Blackwelder, 1946: 662; Monrós, 1949: |

332; Bechyné, 1950: 292; Bechyné, 193388

124; Monrós, 1953: 21; Monrós, 1958: 150;

Jolivet, 1957: 58; Jolivet, 1987: 206.

Apocinocera Blanchard, 1851: 528; Philippi,

1903: 137; Blackwelder, 1946: 662.

ANTECEDENTES HISTORICOS DEL GENERO

Cuando Erichson (1847) describe el género

Stenomela lo ubica en la subfamilia Chrysomeli-

nae; Stal (1865), lo ubica entre los géneros Gas-

troidea y Prasocuris y Chapuis (1874) crea para

este taxón la tribu Stenomelini, a la que también

ubica en la subfamilia Chrysomelinae. Anterior-

mente Blanchard (1851) ha descrito el género

monotípico Apocinocera con la especie A. herba-

cea, taxa que ubica entre los Hispinae y que Cha-

puis (1874) incluye como un apéndice en esta

misma subfamilia.

Con anterioridad von Harold (1875) estable-

ce la sinonimia entre A. herbacea y S. pallida, se-

ñalando además su distribución para Perú y

Chile. Philippi (1903) sin tener antecedentes de

los trabajos anteriores, señala que Apocinocera

es un Eumolpinae y que debe colocarse entre los

Chalcophanites, cerca de Chalcophana y

Corysthea, taxa de distribución neotropical, si-

tuación que se mantiene en el Catálogo de Black-

welder (1946).

Clavareau (1914) sinonimiza la tribu Steno-

melini con Chalcophanini debido a la estructura

del proesterno (Monrós, 1958) y Brethes (1928)

Stenomella pallida, Ontogenia (Crysomelidae: Eumolpinae): JEREZ, V.

considera a Stenomela además de género insólito

y ambiguo, como una forma aberrante y cuyas

analogías con otros géneros se escapan.

Monrós (1949) resalta las semejanzas que

este género tiene con Hornius, revalida y redes-

cribe la tribu Stenomelini creada por Chapuis y la

coloca junto con Hornibiini al principio de las

Eumolpinae americanas.

Bechyné (1950) señala que Stenomela no

pertenece a la tribu Chalcophanini representando

una tribu especial y primitiva de Eumolpinae, si-

tuación que reitera con posterioridad (Bechyné,

1953) al darle el rango de subfamilia, Stenomeli-

nae, y la misma situación se repite para Horni-

bius (=Hornius) al que incluye en Horniblinae.

Finalmente, después de analizar la venación

alar, Jolivet (1957) opina que el género Steno-

mela debería ubicarse en la vecindad de los Eu-

molpinae, en una línea paralela, un poco como

los Megascelinae y Monrós (1958) opina que no

hay ninguna relación de parentesco entre Steno-

mela y Chalcophanini, ya que Stenomela repre-

senta un elemento mucho más primitivo.

Stenomela pallida Erichson, 1847

(Figs. 1 A, 1 B)

Stenomela pallida: Erichson, 1847: 159; Stal,

1865: 287; Chapuis, 1874: 123; Bréthes,

1928: 214; Porter, 1931: 114; Blackwelder,

1946: 662; Monrós, 1949: 552; Bechyné,

1953: 124; Jolivet, 1957: 59; Monrós, 1958:

152; Jolivet, 1987: 206; Solervicens et al.,

1% 0

Apocinocera herbacea Blanchard, 1851: 528;

von Harold, 1875: 183; Philippi, 1887: 170;

Philippi, 1903: 137; Blackwelder, 1946:

662.

DIAGNOSIS:

ADULTO: Cuerpo glabro; disco del pronoto y éli-

tros puntuado; protórax del mismo ancho que la

base elitral.

COLORACION: Los ejemplares vivos de ambos se-

xos presentan el cuerpo incluyendo élitros y pa-

tas de color verde intenso; tarsos amarillentos;

antenas con los primeros 5 antenitos amarillentos

y los 6 restantes de color café rojizo. Ojos y man-

díbulas de color negro (Fig. 1).

HEMBRA: Longitud:12.0 mm; (n=5); Ancho pro-

noto: 3.2 mm.; Ancho humeral: 4.9 mm.

CABEZA: Hipognata. Superficie irregular, con

puntuación grande y profunda dispuesta irregu-

larmente; el espacio entre la puntuación es equi-

valente a dos veces el diámetro de cada una.

Frontoclipeo con el margen anterior emarginado.

Antenas con los cinco primeros segmentos de su-

perficie lisa, brillante, con escasa pilosidad; los

seis siguientes de superficie opaca y con pilosi-

dad corta y densa, de color blanquecino. Escapo

subcilíndrico y globoso; 2” segmento cónico y

corto; 3” dos veces más largo que el 2”; 11” ante-

nito más largo y de ápice aguzado. Mandíbulas

bidentadas, con la superficie masticadora cónca-

va y de borde liso; el diente inferior más aguzado

-y plegado hacia adentro. Ojos relativamente pe-

queños.

ToraAx: Pronoto subcuadrado con márgenes late-

rales débilmente carenados. Puntuación pequeña

y esparcida irregularmente. Proesterno algo con-

vexo, curvado entre las procoxas y bifurcado dis-

talmente. Procoxas transversas y cavidades

procoxales cerradas. Escudo triangular, de ápice

redondeado y superficie glabra. Mesoesterno pla-

no con bordes laterales ligeramente curvados y

con el borde posterior algo rectilíneo. Mesocoxas

globosas; cavidades mesocoxales cerradas y de

contorno circular. Metaesterno sin sutura trans-

versa. Metacoxas transversas; cavidades metaco-

xales alargadas y transversas.

ALAS METATORACICAS: Translúcidas y superficie

recubierta de pelos cortos. Radial (R1), dilatada

distalmente; rt subtriangular. Mancha medio cu-

bital ausente. La ausencia de este carácter sería

propio de los Eumolpinae primitivos (Jolivet,

1957); sin embargo, entre M2 y Cula se observa

una zona más oscura que corresponde a una ma-

yor densidad de pelos que tienen forma de esca-

ma, con base ovalada y ápice aguzado en

dirección anteroposterior (Fig. 2).

METAENDOSTERNITO: Sutura esternal longitudinal

completa y evidente. Furca con un pedúnculo

corto y grueso; las proyecciones furcales dorsola-

terales cortas y anchas, llevan los tendones ante-

riores ampliamente separados. Se presentan

además proyecciones ventrolaterales muy desa-

rrolladas y divergentes (Fig. 4 A).

Paras: Protibias con una espina corta y relativa-

mente gruesa; meso y metatibias con dos espinas

más cortas que las anteriores, de las cuales la ex-

terna es más gruesa y más larga que la interna.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Tarso posterior ampliamente bilobulado, cuya pi-

losidad corta y densa constituye un órgano adhe-

sivo; la microscopía electrónica de barrido revela

que el extremo apical de cada pelo es del tipo es-

patulado provisto a su vez de pequeñas sedas

(Figs. 4 B, 4C ). Uñas simples (Fig. 4 D).

ELITROS: ligeramente convexos y provistos de

puntuación grande y profunda, alternada con

puntuación más pequeña y ordenada en hileras

longitudinales. Epipleura ancha en la base, de

borde sinuado el que se angosta hacia el ápice.

ABDOMEN: 3 esternitos visibles, el primero más

largo que el segundo; esternito V con el borde

apical algo sinuado y provisto de numerosos pe-

los de longitud variable y algunos ligeramente

curvados. Pigidio redondeado y desprovisto de

ornamentación. Pilosidad corta y esparcida.

GENITALIA: Cápsula de la espermateca curvada,

en forma de herradura; ducto espermatecal corto

y fuertemente enrollado sobre sí mismo. Bursa

copulatrix sin escleritos. Glándula espermatecal

poco desarrollada, más corta que el ducto esper-

matecal y no se observan glándulas accesorias

del ovipositor (Figs. 3 A, 4 E, 4 FP).

Macho: Longitud: 9.81mm (n=5); Ancho prono-

to: 2.8 mm; Ancho humeral: 3.66 mm.

Difiere de la hembra además de la menor

longitud corporal, en leves diferencias a nivel de

las mandíbulas. Segmentos antenales un poco

más largos y anchos que en la hembra. Pronoto

subcuadrado. Puntuación elitral de mayor diáme-

tro y más profunda. Pigidio más largo y más an-

cho que en la hembra.

GENITALIA: Lóbulo mediano del tipo seudoarticu-

lado y tegmen incompleto tubular, levemente

curvado, bien quitinizado y con el ápice aguzado.

Saco interno con escleritos dorsales y ventrales.

(Fig. 3 B).

DESCRIPCION DE ESTADOS PREIMAGINALES

Huevos: No reconocibles externamente ya que

están cubiertos por excrecencias digestivas que

forman una escama de color café obscuro, la que

es adherida por su cara inferior al haz o envés de

las hojas de la planta hospedadora (Figs. 1 C, 5

A). Internamente en cada escama se ha constata-

do la presencia de dos huevos ovalados y de co-

rion translúcido.

LARVA: Se reconocen tres estadios que difieren

fundamentalmente, además de la longitud corpo-

ral, en el grado de esclerotización de la cápsula

cefálica y escudo protorácico y en el diseño de

las sensilla de las placas tergales del 8? y 9” seg-

mento abdominal.

DIAGNOSIS: Cuerpo glabro y elongado, débilmente

curvado. Cápsula cefálica y placa pronotal de co-

lor café oscuro y con el tegumento muy escleroti-

zado; 8” segmento abdominal con una placa

tergal; 9 segmento abdominal provisto de un

disco terminal cóncavo (Figs.1 B, 1 D).

COLORACION: Cabeza y cuerpo de color café ver-

doso. Placa tergal del 8 y 9” segmento abdomi-

nal de color café oscuro (Figs. 1 B, 1 D).

LARVA DE PRIMER ESTADIO: Longitud total: 6.2

mm (n=5)

CABEZA: Longitud: 1.1 mm; Ancho: 9 mm; Hi-

pognata; superficie de la cápsula cefálica esclero-

tizada y de aspecto multipapilada; frente

ligeramente cóncava; sutura coronal y suturas

frontales bien delimitadas con una carina medio-

frontal; sutura frontoclipeal no evidente y sutura

epicraneal notoria y cóncava. Epicranio con 4 se-

tas y 4 ocelos redondeados más un ocelo subante-

nal (Fig. 5 B). Antena trisegmentada con un

sensor cónico, relativamente grande. Mandíbulas

subcuadradas sin penicillus, tridentadas, con un

diente apical bien desarrollado y los dos restantes

de borde redondeado y poco evidentes (Fig. 3 D).

Palpo maxilar con 3 segmentos; mala provista de

gran cantidad de pelos cortos, gruesos y rígidos.

Palpo labial con 2 segmentos.

ToraAx: Escudo protorácico subrectangular y cur-

vado lateralmente (ancho: 1.1 mm; longitud: 0.5

mm). Sutura ecdisial notoria. Meso y metatórax

con el tegumento no esclerotizado. Un par de

manchas mesotorácicas laterales de color café en

cuyo centro se ubican 3 espinas cortas y gruesas

que corresponden al ruptor ovis. Espiráculo me-

tatorácico anular y uniforo. Patas bien desarrolla-

das con 3 segmentos incluyendo el tarsungulus,

con la uña curvada en forma de gancho.

ABDOMEN: 9 segmentos visibles, de los cuales los

siete primeros llevan espiráculos uniforos, anula-

res y pequeños. El segmento VIII lleva una placa

tergal esclerotizada de borde anterior convexo y

borde posterior semirrectilíneo. Los espiráculos

se ubican a ambos lados, en posición dorsal y

Stenomella pallida, Ontogenia (Crysomelidae: Eumolpinae): JEREZ, V.

proyectados en cuernos. El segmento IX lleva un

disco cóncavo terminal e igualmente esclerotiza-

do y su margen distal está provisto de pelos lar-

gos y rígidos. Ambas placas tergales están

provistas en su superficie externa de sensilla dis-

puestas irregularmente (Fig. 5 C). Ventralmente

cada segmento está provisto de 4 lóbulos ambu-

latorios. El segmento X lleva un seudópodo anal

provisto de 6 papilas y la abertura anal es de po-

sición ventrocaudal.

LARVA DE TERCER ESTADIO: Longitud: 17.5 mm

(n=5)

CAPSULA CEFALICA: Longitud: 2.5 mm.; Ancho:

2.9 mm. Con 4 setas epicraniales dorsales y dos

setas laterales. Sutura frontoclipeal evidente. 4

ocelos epicraniales y 1 ocelo subantenal. Mandí-

bulas algo aplanadas y con tres dientes de los

cuales el central es más prominente, de base an-

cha y ápice aguzado. Maxila con mala bien desa-

rrollada y provista de 11 espinas cortas y gruesas.

Palpo maxilar trisegmentado. Palpo labial con

dos segmentos (Fig. 5 D).

Torax: Sin manchas mesotorácicas ni ruptor ovi.

Espiráculo mesotorácico y abdominales de diá-

metro anular y uniforo.

ABDOMEN: Segmentos l al VII con espiráculos

anulares. Segmento abdominal VIII provisto de

espiráculos respiratorios corniformes y de pare-

des bien esclerotizadas. Esta larva se reconoce

además por su mayor longitud corporal y por el

diseño de la placa tergal del segmento abdominal

IX, con disposición de sensilla en forma circular

dejando áreas desnudas de distinto diámetro

(Figs. 1B, 5E y 5F). Asimismo, el margen distal

de este segmento está provisto de pelos de menor

longitud que en la larva de primer estadio. Ven-

tralmente cada segmento abdominal está provisto

de 4 lóbulos ambulatorios y el segmento X está

transformado en un seudópodo anal.

Pura: Desconocida.

BIONOMIA: Al parecer Stenomela pallida es una

especie univoltina, cuyo ciclo de vida transcurre

en el período primavera-verano. Los adultos vi-

ven sobre el follaje de la planta hospedadora ali-

mentándose de la lámina foliar y corteza de

ramas y ramillas. Son insectos de desplazamiento

lento, que tienden a permanecer ocultos entre el

follaje, con el que presentan mimetismo cromá-

tico.

Los huevos aparentemente son puestos en

diciembre, sobre el haz o el envés de las hojas y

están protegidos por excrecencias de origen di-

gestivo, de modo que la postura tiene la aparien-

cia de una escama de color café obscuro (Figs.

IC y SA ). Cada postura contiene dos huevos cu-

yo corion es translúcido y visible sólo al levantar

la escama.

Las larvas recién eclosionadas perforan las

paredes de la escama mediante sus mandíbulas y

llevan vida libre, alimentándose de la lámina fo-

liar y desplazándose activamente por el follaje de

las plantas hospedadoras a partir de enero.

DISTRIBUCION GEOGRAFICA: Se conocen registros

desde Rancagua, 34” 10' lat S hasta Río Puelo,

417 39 lat S.

MATERIAL EXAMINADO: 117 ejemplares conserva-

dos en el Museo de Zoología de la Universidad

de Concepción y en el Instituto de Entomología,

Universidad Metropolitana de Ciencias de la

Educación.

CHILE: Provincia Cardenal Caro, noviembre (1

ej.), J. Solervicens col. Provincia de Curicó: Hua-

lañé, Piedras Negras, noviembre (2 ej.), J. Soler-

vicens col. Provincia de Talca: Chanco, Rari,

noviembre (3 ej.), Coipué, noviembre, (lej.),

J.Solervicens col.; Canelillos (7 ej.) Quebrada

Nirú, fundo Celco, noviembre (3 ej.), Quebrada

Piragua, Fundo Celco (4 ej.), J. Solervicens col.;

La Puente, fundo Celco, diciembre (29 ej.), Ca-

rrizal, diciembre (2 ej.), J. Solervicens col.; Pro-

vincia de Linares: Las Vegas, Agua Buena,

Noviembre (4 ej.), J. Solervicens col; Provincia

de Cauquenes: Pelluhue, noviembre (53 ej.), Ca-

nelillos, Chovellén (3 ej.), J. Solervicens col.;

Reserva Los Ruiles, diciembre (8 ej.), J. Solervi-

cens col.; Provincia de Linares: Perquilauquén,

febrero (7 ej.), M. Pino col.; Provincia de Malle-

co: Los Alamos, Ercilla, diciembre (1 ej.), J. So-

lervicens col.; Angol, diciembre (2 ej.), sin col.:

Provincia de Concepción: Santa Juana, km 30,

diciembre (3 ej.); Coronel, km 20, diciembre (8

ej.), J. Solervicens col.; Hualpén, octubre (1 ej.)

V. Jerez col.; Ramuntcho, diciembre (2 ej.), T.

Cekalovic col.; Quebrada Escuadrón,diciembre

(1. ej.), V. Jerez col.: (2 €f.), T.Cekaloyic col Es.

cuadrón, km 15, enero (6 ej.), febrero (3 ej.), V.

Jerez col.; Yerbas Buenas, enero (1 ej.), Malaise

col.; Vichuquén, septiembre (1 ej.), J. Solervi-

Gayana Zool. 59(1), 1995.

cens col.; Provincia de Valdivia: Valdivia, octu-

bre (1 ej.), E. Khramer col.; Provincia de Osorno:

Pucatrihue, noviembre (1 ej.), O.Barros col.; Pro-

vincia de Llanquihue: Puerto Montt, febrero (1

ej.), T. Cekalovic col., Parque Vicente Pérez Ro-

sales, febrero (1 ej.), J. Ohme col; Puerto Montt,

febrero (1 ej.), T. Cekalovic col.; Río Puelo, ene-

to (le].), MiPino coli: Río Puelo; febrero (1e];);

M.Pino col.

ESTADOS INMADUROS: 7 Posturas y 12 Larvas Pro-

vincia de Concepción: Quebrada Escuadrón y Es-

cuadrón, km 15; Hualpén, diciembre, enero,

febrero, V. Jerez col.

PLANTAS HOSPEDADORAS: Se ha detectado la pre-

sencia de adultos, posturas y larvas en Myrtaceae

de las especies Blepharocalyx cruckshanksit, Lu-

ma chequén y Luma apiculata.

DISCUSION

Siendo Stenomela un insecto fitófago, Mon-

rós (1958) señala como planta hospedadora a

Gunnera chilensis (pangue), especie de distribu-

ción gondwanica, aspecto reiterado por Jolivet

(1987).

A partir de este trabajo se establece que el

género Stenomela está asociado a formaciones

vegetacionales de Myrtaceae y en cuanto a su

presencia sobre Gunnera chilensis no es de extra-

ñar ya que esta especie es un componente habi-

tual de zonas anegadas o.muy húmedas como son

estos bosques de pantano.

A pesar de tener líneas de selección trófica

divergentes con el género Hornius y de acuerdo a

los antecedentes entregados por Jerez e Ibarra-

Vidal (1992), vemos que existen notables simili-

tudes en aspectos morfológicos y bionómicos

entre Hornius y Stenomela y las diferencias afec-

tan principalmente al hábitat y presencia estacio-

nal de los adultos.

El estado adulto de ambas especies es coin-

cidente, entre otros caracteres, en la forma del

metaendosternito, espermateca, bursa copulatrix

y estructura del lóbulo medio del edeago.

En relación al desarrollo ontogenético se en-

cuentra que en ambos taxa los huevos están pro-

tegidos por excrecencias digestivas que le dan un

aspecto de escama. La morfología larvaria es

coincidente en el aspecto esclerotizado de la cáp-

sula cefálica, además de la presencia de 4 ocelos

epicraniales y un ocelo subantenal. En ambos gé-

neros las larvas presentan patas de aspecto simi-

lar, en que el tarsungulus termina en una uña

curvada.

Ambos taxa comparten la presencia de dos

escleritos tergales en el VIII segmento abdominal

(con algunas modificaciones) y una placa tergal

en el IX segmento en larvas de tercer estadio de

ambos géneros, lo que sugiere una relación de

parentesco directa entre ambos taxa.

Jerez e Ibarra-Vidal (1992) sugieren que

Hornius tendría vinculaciones con Orsodacninae

por las características larvarias. Sin embargo as-

pectos bionómicos y morfológicos señalados por

Cox (1981) para adultos y larvas de Orsodacni-

nae también son extremadamente disímiles para

los dos taxa analizados. Por esta razón sólo un

estudio filogenético podrá dilucidar la inclusión

de Hornius y Stenomela en Eumolpinae u otra

subfamilia e hipotetizar sobre su historia evolu-

tiva.

AGRADECIMIENTOS

Al profesor Jaime Solervicens por facilitar

el material de Stenomela pallida del Instituto de

Entomología, al dibujante Hipólito Riffo por la

confección de las láminas en colores y al perso-

nal del Laboratorio de Microscopía Electrónica

de la Dirección de Investigación, Universidad de :

Concepción.

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wer Academic Publishers. London. 615 págs.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

uu sz

Fic. 1. Stenomela pallida. Habitus de la hembra; B. Habitus larva de tercer estadio; C. Postura en hoja de Luma

apiculata; D. Placa tergal en VIII y IX segmento abdominal de la larva de tercer estadio.

Stenomella pallida, Ontogenia (Crysomelidae: Eumolpinae): JEREZ, V.

1imm

Fic. 2. Stenomela pallida. Ala. C: vena Costal; Cu 1b, Cu la: venas Cubitales; Cu c: Celda cubital: PCu: vena Post-

cubital: M: vena Mediana; ap: Apertum; R1: vena Radial; rm: vena Radio-Mediana: rt: triángulo radial.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Fic. 3. Stenomela pallida. A. Genitalia femenina. bc: bursa copulatrix; c: cápsula de la espermateca; d: ducto de la

espermateca; ov: oviducto. B. Genitalia masculina. e: edeago; t: tegmen.

Stenomella pallida, Ontogenia (Crysomelidae: Eumolpinae): JerEz, V.

]

Fic. 4. Stenomela pallida. A. Metaendosternito de la hembra. f: furca: te: tendones; p: proyección furcal dorso late-

ral; pv: proyección furcal ventral. sl: sutura esternal longitudinal. B. pilosidad del tercer segmento tarsal. C. Detalle

pilosidad tarsal. S: sedas. D. Uñas del primer par de patas. E. Genitalia femenina. ce: cápsula de la espermateca: d:

ducto espermatecal; F. cápsula de la espermateca. c: collum: d: ducto espermatecal: cr: cornu: gl: glándula de la es-

permateca; n: nodus.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

FiG. 5. Stenomela pallida. A. Postura; B. Larva de primer estadio, cápsula cefálica. e: epicranio; o: ocelos. C. Larva

de primer estadio, placa tergal del VIII y IX segmento abdominal. D. Larva de tercer estadio, cápsula cefálica. a:

antena; m: mandíbula; mx: maxila; pl: palpo labial; E. larva de tercer estadio, placa tergal del VIII y IX segmento

abdominal. sp: espiráculo. F. Detalle de la placa tergal del IX segmento abdominal.

1l2

Gayana Zool. 59(1): 13-22, 1995.

ISSN 0016-531X

DISTRIBUCION GEOGRAFICA DE AEGLA PAPUDO SCHMITT, 1942

(CRUSTACEA: DECAPODA: ANOMURA: AEGLIDAE) Y ESTADO DE

CONSERVACION DE SUS POBLACIONES

GEOGRAPHIC RANGE OF AEGLA PAPUDO SCHMITT, 1942

(CRUSTACEA: DECAPODA: ANOMURA: AEGLIDAE), AND

CONSERVATIONAL STATUS OF ITS POPULATIONS

Carlos G. Jara*, Marcelo Cerda* y Alvaro Palma**

RESUMEN

Se actualizan los límites distributivos de Aegla

papudo, agregando catorce registros a los ocho que

existían en la literatura. El límite norte de A. papudo

permanece en el río Choapa pero el límite sur se

extiende hasta Quintay, 22 km al sur de Viña del Mar.

Se omite intencionalmente el registro de A. papudo en

Talcahuano por la expedición del "Hassler". Explora-

ciones recientes en Papudo, localidad tipo de la

especie, y en otras localidades en que había sido pre-

- viamente registrada, sugieren que varias poblaciones

de A. papudo se han reducido mucho o han desapareci-

do. Se presume que el deterioro ambiental, asociado a

las perturbaciones inducidas por la actividad humana,

podría amenazar seriamente la persistencia de la

especie.

PALABRAS CLAVES: Crustacea, Anomura, Aegla, A. pa-

pudo, distribución, conservación, Chile.

ABSTRACT

Los argumentos básicos de la zoogeografía

son los mapas de distribución de los taxa anima-

les. Sin embargo, los límites del rango geográfico

de muchos taxa vivientes han variado substan-

cialmente por efecto de las actividades humanas.

Por una parte, la explotación de los stocks silves-

tres de muchas especies, la destrucción de sus ha-

bitats y la degradación de sus ambientes ha

* Instituto de Zoología, Facultad de Ciencias; Univer-

sidad Austral de Chile. Casilla 567, Valdivia, Chile.

**Departamento de Zoología y Ecología; Facultad de

Ciencias Biológicas; Pontificia Universidad Católica

de Chile. Casilla 114-D, Santiago, Chile.

The geographic range of Aegla papudo is reviewed

and fourteen new records are added to the eight pre-

viously reported in literature. Thus, the northern limit

Of A. papudo stays at the Choapa river but its southern

limit extends to Quintay, 22 km south of Viña del Mar.

The record of A. papudo from Talcahuano, by the

"Hassler" expedition, is intently ommited. Recent ex-

ploration at Papudo, the species type locality, and

other sites where the species had been previously re-

gistered, suggests that several populations of A. papu-

do are badly reduced or extinguished. It is presumed

that environmental deterioration associated to human

activities may constitute a menace to the species sur-

vival.

KEYWwORDs: Crustacea, Anomura, Aegla, A. papudo,

distribution, conservation, Chile.

INTRODUCCION

fragmentado, reducido o desplazado sus ámbitos

de distribución. Por otra, la utilización tecnológi-

ca de numerosas especies, ya sea como recurso

alimenticio, como mascotas o como animales de

laboratorio, ha ampliado enormemente sus ran-

gos geográficos. De allí que la determinación de

los límites de distribución de las especies silves-

tres sea hoy una necesidad imperiosa, frente a la

siempre presente posibilidad de que las activida-

des humanas modifiquen drásticamente el cuadro

distributivo en el futuro próximo y distorsionen

con ello los argumentos zoogeográficos.

Aeglidae es la única familia de crustáceos

anómalos cuyas especies actuales son exclusiva-

mente dulceacuícolas. Todas ellas están geográfi-

camente restringidas al Cono Sur de Sudamérica

(Schmitt, 1942) y constituyen elementos faunísti-

Gayana Zool. 59(1), 1995.

cos sin parangón en las aguas continentales del

resto del mundo.

Aegla papudo Schmitt, 1942, destaca entre

las especies del ámbito andino por poseer una se-

rie de rasgos morfológicos exclusivos que la

apartan del resto de las especies, así como por ser

la especie de aeglido que tiene la distribución

geográfica más septentrional en Chile (Schmitt,

1942; Bahamonde y López, 1963). En conse-

cuencia, su distribución marca el límite norte de

la distribución del género en la vertiente occiden-

tal del continente. Sin embargo, la delimitación

de su rango geográfico está basada en un corto

número de registros (ver Bahamonde y López,

1963), de manera que su real extensión está aún

por determinarse. En la presente nota se examina

la distribución geográfica de Aegla papudo y se

revisa la situación de conservación de la especie

de acuerdo a antecedentes recogidos en el te-

rreno.

MATERIALES Y METODOS

El material zoológico que sustenta el pre-

sente trabajo se encuentra depositado en colec-

ciones institucionales nacionales y extranjeras.

La mayor parte de él fue recolectado por recolec-

tores ocasionales, quienes no dejaron registro de

las condiciones ambientales en que fueron encon-

trados los animales. La información que al res-

pecto se consigna más adelante procede de

excursiones intencionalmente dirigidas a recolec-

tar A. papudo en localidades donde había sido

previamente registrada o en las cuales se presu-

mió podría estar presente. El primer autor reco-

rrió parte de la cuenca del río Ligua (entre

Quínquimo y Cabildo) y parte de la cuenca del

río Petorca (entre Pedegua y Petorca) en febrero

de 1980; parte de la cuenca del río Maipo (Em-

balse El Yeso a El Monte) en febrero de 1983 y

localidades costeras (Papudo, Zapallar y Cacha-

gua) en febrero de 1985. El segundo autor explo-

ró parte de la cuenca del río Puangue (Curacaví)

y del río Casablanca en enero de 1992 y el tercer

autor recolectó en el arroyo Quintay, en noviem-

bre de 1991. En la recolección de Aegla se em-

pleó una red sacciforme, con boca de 70 x 70 cm

y 1 mm de abertura de malla, arrastrada a contra-

corriente hasta barrer un área entre 20 y 50 m? de

fondo de río.

Las colecciones en que se encuentra deposi-

tado el material examinado y las siglas con que

serán referidas en el texto subsiguiente son:

IZUA: Instituto de Zoología, Universidad Austral

de Chile, Valdivia, Chile.

MCZ: Museum of Comparative Zoology, Har-

vard, USA.

MNHN: Museo Nacional de Historia Natural,

Santiago, Chile.

MNHN-Pa: Museum National d'Histoire Nature-

lle, Paris, Francia.

SNR-LUCE: Svenka Naturhistoriska Riksmu-

seet, Copenhague, Suecia. Lund University Chile

Expedition.

USNM: United States National Museum, Smith-

sonian Institution, Washington, USA.

TAXONOMIA

Aegla papudo Schmitt, 1942.

(Fig. 1)

Aegla papudo Schmitt, 1942:483-487, fig. 54,

lám. 27C (descripción). Ringuelet, 1949:116-

117. Haig, 1955:28. Bahamonde y López,

1963:134. Manning y Hobbs, 1977:159 (men-

ción). Retamal, 1981:21, fig. 81. Martin y Abele,

1988:40.

DiacNOsIs: Aegla de caparazón angosto, notoria-

mente convexo de lado a lado y marcadamente

punteado; área gástrica prominente; frente estre-

cha dorsalmente deprimida; rostro lingulado, su

tercio distal plano a plano cóncavo terminado en

ápice respingado; márgenes rostrales con fila de

gruesas escamas lentiformes; órbitas oculares

profundas, separadas por proceso subrostral ma-

cizo y prominente; espina orbitaria esporádica,

frecuentemente ausente; diente epibranquial in-

corporado al pterygostomio por ausencia de rama

ventral de la linea aeglica; "barras" de las suturas |

dorsobranquiales subparalelas a la línea media |

corporal, distalmente convergentes; telson sin su-

tura media funcional.

MATERIAL TIPO: Holotipo (Field Museum +2285)

es el macho mayor (26.0 mm LC) de un lote de

14 machos y 6 hembras, recolectado el 3 de fe- |

brero de 1925 por J.A. Wolffsohn. Paratipos:

Distribución geográfica de Aegla papudo Schmitt, 1942: Jara, C., M. CERDA Y A. PALMA

Field Museum ++2286, USNM F169114.

LocALIDAD TIPO: Papudo, Chile (Schmitt, 1942).

DISTRIBUCION GEOGRAFICA

En la Tabla Í se indican localidades, cuencas

hidrográficas y fecha (año) en que se ha registra-

do A. papudo, ordenadas de norte a sur. El resto

de la información relativa al material zoológico

referido en la Tabla I (Colección; número, talla y

sexo de los especímenes; nombre del recolector;

notas) se encuentra en el Apéndice 1.

De los veintidós registros consignados en la

Tabla L, ocho fueron tomados de la literatura y

catorce son nuevos. De éstos, ocho informan de

la existencia de A. papudo en cuencas hidrográfi-

cas en las cuales no existían antecedentes previos

de su presencia, 1.e. ríos Petorca, La Ligua, Mar-

ga Marga, quebradas Curauma y Quintay y río

Puangue (tributario del río Maipo). El registro en

Quintay es el más reciente y extiende el rango

geográfico conocido de A. papudo en 22 km ha-

cia el sur de Viña del Mar, la localidad costera

más austral en que previamente se registró la es-

pecie (véase Haig, 1955; Bahamonde y López,

1963). Los registros disponibles delimitan el ran-

go geográfico de A. papudo entre los 31%35' S y

los 33%40' S, restringiendo la especie a las cuen-

cas hidrográficas de los ríos Choapa, Petorca, La

Ligua, Papudo, Catapilco, Aconcagua, Marga

Marga, Laguna Verde, Quintay, Puangue y Ma-

pocho (Fig. 2).

Omisión del registro de A. papudo en Talca-

huano por la Expedición del "Hassler”. En el

Museo de Zoología Comparada (Harvard,

U.S.A.) se encuentra la muestra MCZ 10480,

mencionada por Schmitt (1942:486). La muestra

consiste de 3 machos y 1 hembra adultos de A.

papudo, recolectados por la Expedición del

"Hassler" y referida a la localidad Talcahuano

(Chile), sin indicar fecha de recolección. El bu-

que "Hassler", del U.S. Coast Survey, viajó des-

de Boston a San Francisco entre 1871 y 1872,

llevando al Prof. Louis Agassiz a cargo del de-

partamento científico. La nave permaneció en

Talcahuano, por razones técnicas, entre el 16 y el

25 de abril de 1872 (Peirce y Patterson, 1879).

Uno de los autores (C.G.J.) examinó la

muestra en cuestión en abril de 1991 y corroboró

la asignación taxonómica de los especímenes.

Sin embargo, exploraciones realizadas entre sep-

tiembre y octubre de 1989 en la zona de Concep-

ción, Talcahuano y Tomé, sumado al examen de

al menos 20 muestras de Aegla depositadas en el

Museo del Departamento de Zoología de la Uni-

versidad de Concepción (MUZUC), provenientes

de esa zona, no lograron confirmar la presencia

de A. papudo allí. Surgió entonces la hipótesis de

que los especímenes recolectados por los expedi-

cionarios del "Hassler" pudieron ser recogidos en

otro punto del país y referidos posteriormente a

Talcahuano.

En carta fechada en Cambridge el 27 de ju-

nio de 1990, la Dra. Ardis B. Johnston, Curador

Asociado de la sección Zoología de Invertebra-

dos del Museo de Zoología Comparada (Harvard,

USA), comunicó haber hallado, en el depósito de

libros raros de la Universidad de Harvard, el do-

cumento "Narrative of the voyage in the form of

letters written on board by Mrs. Agassiz, publis-

hed in the Boston Transcript and the New York

Tribune". El documento consiste en una serie de

recortes de periódico. Una de las cartas, fechada

en Valparaíso el 11 de mayo de 1872, informa

acerca de la detención de la expedición en Talca-

huano. En lo que interesa dice: "On the afternoon

of April 25, our machine work being conclu-

ded...we got under way...heading towards the

northwest, for Juan Fernandez...Professor Agas-

siz [Jean Louis] and Dr. Steindachner also, sta-

yed (behind) intending to make an overland trip

of a few hundred miles". Lo anterior deja en cla-

ro que una parte de los expedicionarios viajó por

tierra desde Talcahuano a Valparaíso. Este dato

hace plausible la hipótesis que ellos recolectaron

los especímenes de A. papudo en las proximida-

des de Valparaíso, cerca de la finalización de su

viaje, pero por razones que desconocemos refi-

rieron el material a Talcahuano, su punto de par-

tida.

Por lo anterior, los presentes autores com-

parten el criterio de Bahamonde y López (1963)

de omitir este registro, por considerar muy dudo-

sa la existencia pretérita de A. papudo en Talca-

huano o en sus inmediaciones.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

ESTADO DE CONSERVACION DE LAS POBLACIONES DE

A. papudo.

Los registros mencionados en la Tabla I fue-

ron obtenidos por diferentes recolectores en un

lapso de tiempo relativamente largo (1925 a

1991), en relación a la rapidez con que los cuer-

pos acuáticos continentales de la Zona Central de

Chile han acusado los efectos de la intervención

antrópica. Por esta causa es presumible que más

de uno de los registros no sea ya vigente. La Ta-

bla II informa de los resultados obtenidos al rea-

lizar excursiones de muestreo a localidades

donde previamente se había registrado A. papudo

o donde, de acuerdo a la información disponible,

era presumible encontrarla.

Destaca entre estas excursiones la realizada

a Papudo, localidad tipo de la especie, en enero

de 1994. El muestreo se realizó en el único curso

de agua superficial que atraviesa el área urbana

(Fig. 3), presumiendo que éste fue el sitio visita-

do por el recolector J. A. Wolffsohn en 1923. Se

concluyó que A. papudo ya no existe en su Loca-

lidad Tipo. En enero de 1992 uno de los autores

(M.C.) exploró además en tres puntos del curso

del Estero [río] Casablanca, inducido por infor-

mación proporcionada por lugareños que afirma-

ron haber visto allí "cangrejos de río" antes de

enero de 1992. Los puntos muestreados fueron:

a) extremo norte del poblado de Casablanca; b)

en la localidad de Las Dichas; y c) en Tunquén,

cerca de la desembocadura del río Casablanca al

mar. En los tres puntos se hallaron ambientes de

aguas semiestancadas en un cauce de baja pro-

fundidad casi completamente cubierto de vegeta-

ción acuática emergente. En la zona aledaña al

poblado de Casablanca se observaron además

signos de contaminación por aguas servidas no

tratadas y profusión de desperdicios y basura en

el ámbito del cauce. En ninguno de los puntos se

registró A. papudo, concluyéndose que muy pro-

bablemente las poblaciones de la especie se ex-

tinguieron.

OBSERVACIONES SOBRE EL HABITAT DE A. papudo.

Los registros disponibles sindican a A. pa-

pudo como una especie reófila que habita en cur-

sos de agua corriente de diferente magnitud. Sin

embargo, la literatura no registra información

acerca de las condiciones ambientales prevalen-

tes en los sitios en que se recolectaron los especí-

menes. Tampoco existe información acerca de la

historia natural de la especie y menos aún sobre

límites de tolerancia fisiológica a las alteraciones

ambientales. La información recogida en terreno

al momento de recolectar la muestra IZUA C-

481 describe las condiciones ambientales en las

cuales se encuentran hoy la mayoría de las pobla-

ciones de A. papudo.

A. papudo fue recolectada en Petorca (Río

Sobrante, 16 de febrero de 1980, IZUA C-481)

en la vecindad inmediata del poblado. El cauce

es amplio y carece de cobertura arbórea ribereña.

El caudal no pasaba de 1,5 a 2 m*/seg. El agua

escurría sobre fondo de ripio grueso, grava y are-

na a una velocidad estimada en 0,05 m/seg. La

temperatura del agua a las 14.30 h fue de 22*C.

Los bolones del fondo estaban cubiertos de algas

filamentosas y en los remansos marginales había

depósitos de materia orgánica microparticulada

en putrefacción que servía de sustrato a plantas

acuáticas emergentes (Elchornia crassipes). El

agua se apreció turbia, al punto que no se veía el

fondo en lugares de más de 0,5 m de profundi-

dad. El caparazón de los especímenes de A. pa-

pudo estaba cubierto, en grado variable, por una

capa de material microparticulado de color pardo

a blanquecino, de aspecto mucilaginoso, adheri- |

do preferentemente a las cerdas del plastrón es-

ternal, a la cara ventral de las quelas y al borde

de los epímeros abdominales. El mismo material

se encontró también sobre las superficies bran-

quiostegales. |

DISCUSION

A. papudo es la especie de aéglido que tiene

el rango geográfico más septentrional y al mismo )

tiempo uno de los más extensos en territorio chi- -

leno. En efecto, entre Huentelauquén y Talagante >

hay aproximadamente 230 km en línea recta.

Empero, informaciones no confirmadas hacen

presumir que hasta la década 1970-80 A. papudo

se encontraba también en el curso superior del río

Copiapó (Dra. Gloria Arratia, com.pers.).

El rango geográfico de A. papudo se sobre- |

pone sólo parcialmente con el de A. laevis laevis

(Latreille) en la cuenca del río Maipo (ver Baha-

monde y López, 1963), al extremo sur de su ran-

Distribución geográfica de Aegla papudo Schmitt, 1942: Jara, C., M. CERDA Y A. PALMA

go geográfico. En mayor extensión se sobrepone

con Cryphiops caementarius (Molina), única es-

pecie de Palaemonidae presente en Chile conti-

nental, del cual existen registros en los ríos La

Ligua y Aconcagua, Valparaíso y R. Maipo (Te-

jas Verdes) (véase Bahamonde y López,

1963:126). Sin embargo, no existen antecedentes

sobre la concurrencia de A. papudo en simpatría

con ninguna de ambas especies.

La mayor parte de las poblaciones de A. pa-

pudo se encuentran en cursos fluviales del Norte

Chico, unidad geomorfológica comprendida en-

tre La Serena y el río Aconcagua. Desde el punto

de vista biogeográfico, es una zona transicional

entre ambientes xeromórficos por el norte y am-

bientes mesomórficos a higromórficos por el sur

(Quintanilla, 1983). En este ámbito geográfico A.

papudo ha sido registrada en cursos de agua de

diferente magnitud, desde ríos como el Choapa y

Aconcagua hasta pequeños arroyos como el Cu-

rauma y el Quintay. También ha sido registrada

en al menos un cuerpo léntico, el Tranque Retiro.

En algunos puntos, particularmente en Zapallar y

en el Palmar de Ocoa, A. papudo se encuentra

asociada a formaciones vegetacionales relictua-

les. En las quebradas costeras como Zapallar, Ca-

chagua, Quintero y probablemente Papudo, se

encuentran o encontraban formaciones boscosas

que representan relictos de la expansión septen-

trional pleistocénica de la pluviselva valdiviana

(Quintanilla, op. cit.). En el Palmar de Ocoa, en

cambio, A. papudo se encuentra en territorio de

Jubaea chilensis, un relicto Terciario de origen

tropical que ocupa pequeñas quebradas de la

Cordillera de la Costa, entre 33% y 34” S (Quinta-

nilla, op. cit.). Si a ello se suma el registro de A.

papudo en localidades como Cuncumén, en el

curso superior del río Choapa, o Petorca en la

cuenca del río La Ligua, ambas en los áridos fal-

deos preandinos, se puede concluir que A. papu-

do soporta además un rango de condiciones

ambientales muy disímiles.

Lo anterior hace presumir que la presencia

de A. papudo tiene una larga historia en el área y

probablemente esta especie constituye o constitu-

yó un importante elemento faunístico dentro de

la constelación de especies que conforman la bio-

diversidad de las aguas continentales de la zona.

Lamentablemente, la violenta transformación del

paisaje, asociada al desarrollo de actividades

agrícolas y mineras intensivas, pretéritas y con-

temporáneas, pone en serio peligro la subsisten-

cia de las poblaciones de A. papudo, como pare-

cen indicarlo los datos entregados en este trabajo.

AGRADECIMIENTOS

A la Fundación Andes (Chile) y a la Smith-

sonian Institution (USA), la beca de 10 semanas

que permitió al primer autor examinar paratipos

de A. papudo en el National Museum of Natural

History, Washington, D.C., (USA), en 1990. A la

Dra. Ardis B. Johnston, del Museo de Zoología

Comparada de Harvard, el préstamo de los espe-

címenes recolectados por la Expedición "Hass-

ler" y por su valiosa colaboración bibliográfica.

Al Dr. Pedro Báez y a la Sra. Rosario Ruiz, del

Museo Nacional de Historia Natural (Santiago),

las facilidades para revisar la Colección de Decá-

podos de Aguas Continentales. A los Dres. Jac-

ques Forest y Nguyen Ngoc-Ho, del Muséum

National d'Histoire Naturelle (París), el préstamo

de la nuestra MNHN-Ga 317. Al Dr. Carlos Ra-

mírez, Instituto de Botánica, UACh, la determi-

nación taxonómica de los hidrófitos. A la Sra.

Ma. Cristina Vásquez el trabajo gráfico y la cura-

ción de la Colección IZUA. A dos revisores anó-

nimos, sus sugerencias para mejorar el

manuscrito. Este trabajo fue financiado por los

proyectos FONDECYT 91-0900 y DID S-91-4

de la Dirección de Investigación y Desarrollo de

la Universidad Austral de Chile.

LITERATURA CITADA

BAHAMONDE, N. Y M.T. Lorez, 1963. Decápodos de

Aguas Continentales en Chile. Invest. Zoológicas

Chilenas, 10:123-149.

Har6, J. 1955. The Crustacea Anomura of Chile. Re-

port Lund University Chile Expedition 1948-49.

Lunds Univ. Ársskr., N.F. (2)51(12):1-68.

MAnNNING, R.B. y H.H. Hosss, JR. 1977. Decapoda. /n:

Biota Acuática de Sudamérica Austral (S.H.

Hurlbert, ed.): San Diego State University, San

Diego, California: 157-162.

MAarTIN, J.W. Y L.G. AñeLE. 1988. External Morpho-

logy of the Genus Aegla (Crustacea: Anomura:

Aeglidae). Smithsonian Contributions to Zoo-

logy, 453 :1-111+1-46.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Perrce, B. y C.P. PATTERSON. 1879. List of dredging

stations occupied by the United States Coast

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and "Blake", from 1867 to 1879. Bulletin of the

Museum of Comparative Zoology, 6(1):5-15.

QuinTAnNILLa, V. 1983. Biogeografía. In: Geografía de

Chile; Instituto Geográfico Militar (ed.), Vol. 3,

230 pp.

ReraMaL, M.A. 1981. Catálogo Ilustrado de los Crus-

táceos Decápodos de Chile. Gayana (Zoología),

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RINGUELET, R. 1949. Consideraciones sobre las relacio-

nes filogenéticas entre las especies del género

Aegla Leach (Decapodos: Anomuros). Notas del

Museo de La Plata 14, Zool., 120:111-118.

Scumrirr, W.L. 1942. The species of Aegla, endemic

South American fresh-water crustaceans. Proc.

U.S. Nat. Mus., 91:431-520, pls. 25-28.

Fic. 1. Macho adulto de A. papudo, en vista dorsal. IZUA C-481.

Distribución geográfica de Aegla papudo Schmitt, 1942: Jara, C., M. CERDA Y A. PALMA

De y

NODRLILSN

NV 11H) O

TÁ ON

vI1W

ODIN) O

03ny ap

Oo]

a Nvsé

VNDVINY

Dv NV SpA

341134 NY

ZÁ S30Ny SQ1

1VNOI938 3110 |—:—

1VNOI/D9UNY3LNI JUAN | — —

F¡G. 2. Distribución geográfica de A. papudo. Las estrellas indican localidades en las que se ha registrado 1

especie.

PACIFICO

(e)

Fic. 3. Mapa de la localidad de Papudo. La estrella señala el punto en que se muestreó, sin éxito, en enero de 1994.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Tabla I. Localidades, cuencas hidrográficas y fecha (año) en que se ha registrado A. papudo Schmitt. En

aquellos casos en que la información procede de publicaciones previas se indica la referencia bibliográ-

fica. En caso contrario se consigna el número de Colección.

Localidad Cuenca Ubicación Año de Colección o

Hidrográfica Geográfica recolección referencia

Lat.S Long.W (ES)

Huentelauquén R.Choapa UE SIA, 1981 IZUA C-526

Mapel R.Choapa SB TAO 1959 (a)

Salamanca R.Choapa 31%47', 71958' 1985 IZUA C-711

Petorca R.Petorca SASOESO: 1980 IZUA C-481

La Patagua R.La Ligua Dl 1964 MNHN 2416

La Patagua R.La Ligua IA IS 1978 IZUA C-414

Papudo Qa.Papudo SS A SZ 7 1925 (c)

San Alfonso R.Catapilco a 7er 1953 (a)

Putaendo R.Aconcagua 32938", 704". (a)

Llay Llay R.Aconcagua MI == (a)

Palmar de Ocoa R.Aconcagua SUS ISOS! 1956 (a) -

Palmar de Ocoa R.Aconcagua A ISS 1986 IZUA C-713

Olmué R.Aconcagua SAO ACID 1952 MNHN 2043

Parque Vergara Viña del Mar SOL MIESes 1948 (b)

Valparaíso Valparaíso IIFOZ MBR MNHN-Pa 317

Tranque Retiro R.Marga Marga 33%03', 71%28' 1983 IZUA C-684

Laguna Verde Qa.Curauma SIDO MESS 1961 MNHN 2415

Quintay Qa.Quintay IS 1991 IZUA C-858

Curacaví R.Puangue 3324", 71%09' 1963 MNHN 2187

Curacaví R.Puangue II ADS) 1963 MNHN 2189

Curacaví R.Puangue 33924", 71%09' 1985 IZUA C-714

Talagante R.Mapocho 33240", 706 =-=---- (c)

(+): (a) Bahamonde y López, 1963.

(b) Haig, 1955.

Distribución geográfica de Aegla papudo Schmitt, 1942: Jara, C., M. CERDA Y A. PALMA

Tabla II. Lista de localidades del sector meridional del rango geográfico de A. papudo, visitadas entre 1980 y 1994,

en las que la búsqueda de la especie tuvo resultados negativos.

Fecha e .

informante

Feb. 1980

C.G. Jara

Feb. 1983

C.G. Jara

Feb. 1985

C.G. Jara

Enero 1992

M. Cerda

Enero 1992

M. Cerda

Enero 1992

M. Cerda

Enero 1992

M. Cerda

Enero 1992

- M. Cerda

Enero 1994

V. Cabezas

C.G. Jara

Localidad

Río La Ligua,

en Quínquimo,

bajo puente

Carretera 5.

Río Mapocho,

S km río abajo

de Talagante

Zapallar.

Quebradas

aledañas al

poblado.

Estero [río]

Casablanca

Salida norte

del pueblo

Casablanca.

Estero [río]

Casablanca,

en Las Dichas.

Estero [río]

Casablanca,

en Tunquén.

Estero [río]

Puangue en

Curacaví, 1

km río abajo

de puente sobre

Carretera 68.

Estero [río]

Puangue, en

Los Rulos;

5 km río abajo

desde Curacaví.

Papudo.

Quebrada de

Papudo, en

el radio urbano.

Observaciones

Ambiente marcadamente eutrófico. Fondo de ripio grueso

semicubierto por sedimento fino floculento de color pardo

amarillento. Riberas y parte del cauce cubierto de densa

vegetación herbácea.

Ambiente contaminado con aguas servidas no tratadas; nau-

seabundo. Sustrato de ripio y arena recubierto de costra

grisácea de materia orgánica floculenta,hongos filamentosos

y algas verde-azules.

Cauces secos. Poblaciones de A. papudo presumiblemente

extinguidas.

Sector del cauce amplio, de poca profundidad (10 a 15 cm):

corriente imperceptible; fondo fangoso; agua turbia por ma-

terial particulado. Contaminación por basura urbana.

Confluencia de aguas provenientes de los embalses Lo Ova-

lle y Perales.Sector del cauce de poca profundidad (10 cm) y

corriente imperceptible, cubierto de vegetales acuáticos

(predomina Eichornia crassipes).Fondo fangoso aunque no

maloliente.

Sector costero; el agua del río se mezcla con agua de mar en

una pequeña laguna de agua salobre.

Ambiente muy alterado, al parecer contaminación con

aguas servidas no tratadas. Fondo de arena y ripio cubierto

por gruesa capa de materia orgánica en descomposición.

Temperatura del agua: 25"C.

Ambiente de aguas semiestancadas y fondo fangoso inten-

samente reductor, mantiene densa población de vegetales

acuáticos (Azolla filiculoides Lam. y Lemnaea gibba L.

como especies dominantes).

Ambiente profundamente alterado por destrucción de la

vegetación ribereña, desecamiento y eutroficación cultural.

Contaminación con basura urbana. Nauseabundo.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

'APENDICEA

LISTA DEL MATERIAL EXAMINADO EN ESTE TRABAJO

Para cada lote se indica la colección en que se encuentra depositado, la localidad de recolección, el

nombre del recolector, la fecha de recolección y el número y la talla de los especímenes que lo compo-

nen. La talla corresponde a la longitud cefalotorácica (LC), medida entre el extremo distal del rostro y

el borde posterior del caparazón cefalotorácico, expresada en milímetros.

Las muestras se ordenaron por localidades, de norte a sur.

IZUA C-526, río Choapa, (Huentelauquén?), I.Vila coll., 01 Oct 1981, 6 machos (24,6-30,3 mm LC) y

2 hembras (21,5-22,2).- MNHN 2.032, Illapel, L.Peña coll., 20 Oct 1959, 14 machos (11,0-26,5) y 6

hembras (10,2-22,4).- IZUA C-711, Arroyo Quelén, Salamanca, E. de la Hoz coll., 14 Sep 1985, 1 ma-

cho (25,0).- IZUA C-481, río Sobrante, Petorca, C.G.Jara coll., 16 Feb 1980, 43 machos (8,5-21,5) y 35

hembras (9,8-20,5).- MNHN 2.416, [río] La Patagua, ca. La Ligua, R. Henríquez coll., 10 Ene 1964, 1

macho (22,8).- IZUA C-414, río La Patagua, 5 km E. de La Ligua, L. Angulo coll., 28 Ene 1978, 1 ma-

cho (17,4) y 7 hembras (15,0-19,0).- USNM 169114, Papudo, J.A.Wolffsohn coll., 03 Feb 1925, 3 ma-

chos (16,7-25,0) y 1 hembra (17,9), "taken from the largest lot at the Field Museum" (nota manuscrita

de W.L.Schmitt en etiqueta adjunta).- MNHN 2.023, San Alfonso, Zapallar, T.M.López e 1.Otsu coll.,

24 Feb 1953, 8 machos (10,2-24,3) y 7 hembras (10,6-16,3).- MNHM 2.102, Palmar de Ocoa, N.Baha-

monde y M.T.López coll., 10 Nov 1956, 18 machos (15,0-26.4) y 13 hembras (16,2-20,5).- IZUA C-

713, Palmar de Ocoa, Parque Nacional La Campana, Quillota, D.Soto y P.Sánchez coll., 22 Oct 1986, 4

machos (14,4-24,2).- MNHN 2.043, Olmué, N.Bahamonde y E.Hermosilla coll., 10 Nov 1952, 33 ma-

chos (6,0-22,4) y 18 hembras (5,5-19,0).- IZUA C-684, Tranque Retiro, Quilpué, J.Araya coll., 03 Jun

1983, 2 machos (10,8-24,0) y 1 hembra (17,3).- SNR-LUCE, Parque Vergara, Viña del Mar, 05 Oct

1948, 2 machos (22,1-23,5).- MNHN-Pa Ga.317, Valparaíso (Chile), sin fecha de recolección ni nom-

bre del colector, 3 machos (12,3-24,4) y 1 hembra (15,2).- MNHN 2.415, arroyo Curauma, 4 km al S

de Laguna Verde, Valparaíso, L.Buckle coll., 09 Abr 1961, 1 macho (26,0).- IZUA C-858, Quebrada

Quintay, Quintay, A.Palma coll., 14 Nov 1991, 3 machos (19,2-23,5) y 1 hembra (18,3).- MNHN 2.187,

Curacaví, 1000 m [altura], G.Mann coll., 03 Dic 1963, 1 hembra (18,4).- MNHN 2.189, Curacaví,

W.Hermosilla coll., 05 Dic 1963, 3 machos (23,4-26,7) y 2 hembras (29,0-19,5).- IZUA C-714, río

Puangue en Curacaví, E.de la Hoz coll., 29 Sep 1985, 5 machos (22,3-29,0) y 1 hembra (23,3).- MCZ

10480, Talcahuano (?) (Chile), Hassler Expedition, sin fecha de recolección, 3 machos (23.0 el mayor)

y 1 hembra.

Gayana Zool. 59(1): 23-40, 1995.

ISSN 0016-531X

FORAMINIFEROS BENTONICOS RECIENTES DEL SUR DE CHILE

RECENT BENTHIC FORAMINIFERA FROM SOUTH OF CHILE

Jaime Zapata M., Claudia Zapata V. y Ana Gutiérrez M.*

RESUMEN

Se estudiaron los foraminíferos bentónicos recientes

del área comprendida entre los 39 y 42* S, del sur de

Chile. En total se determinaron 68 especies, de las cua-

les 59 fueron calcáreas y 9 aglutinadas. Además se

mencionan por primera vez para Chile a Bolivina dif-

formis (Williamson) y Triloculina trigonula (La-

marck).

PALABRAS CLAVES: Foraminíferos bentónicos, taxono-

mía, sur Chile.

INTRODUCCION

Las investigaciones sobre la foraminifero-

fauna bentónica reciente de Chile continental e

insular (Orbigny, 1839; Brady, 1884; Egger,

1893; Murray, 1895; Cushman € Wickenden,

1929; Cushman « Kellett, 1929, Heron-Allen é

Earland, 1932; Bandy £ Rodolfo, 1964; Boltovs-

koy 8 Theyer, 1965, 1970; Theyer, 1966, 1971;

Saidova, 1969, 1971, 1975; Khusid, 1971, 1974,

1977, 1979a y b; Boltovskoy, 1972; Zapata á

Varela, 1975, 1981; Zapata 8 Rosas, 1976; Mc-

Culloch, 1977) se han ido incrementando gra-

dualmente durante los últimos años (Boltovskoy

«€ Zapata, 1980; Ingle ef al., 1980; Resig, 1981;

Boltovskoy $ Totah, 1987; Zapata « Alarcón,

* Depto. Ciencias Básicas. Universidad de Los Lagos,

Casilla 933, Osorno, Chile.

ABSTRACT

Recent benthic foraminifera from the area between the

39 and 42" S, from southern of Chile, were studied. A

total of 68 species were found: 59 were calcareous and

9 agglutinated. Furthermore, Bolivina difformis (Wi-

lliamson) and Triloculina trigonula (Lamarck) are

mentioned for the first time for Chile.

KEYworDs: Benthic foraminifera, taxonomy, south

Chile.

1988; DiSalvo et al., 1988; Zapata, 1990; Mar-

chant, 1993). Sin embargo, aún permanecen defi-

cientemente conocidos los foraminíferos litorales

del sur de Chile. Por tal motivo, el presente tra-

bajo está orientado a entregar nuevos anteceden-

tes taxonómicos de los foraminíferos de dicha

zona.

MATERIALES Y METODOS

El material que sirvió de base para este estu-

dio fue extraído, durante los años 1975 a 1990,

desde estaciones ubicadas en la zona comprendi-

da entre los 39%26'-41%52' de latitud sur (Tabla D,

a profundidades de 0-20 m.

Las muestras de profundidades someras (0-3

m) se obtuvieron empleando un extractor manual

Lankford, las de profundidades mayores (4-20

m) por medio de un tubo metálico arrastrado so-

bre el fondo marino.

159]

¡09

Gayana Zool. 59(1), 1995.

El sedimento, aproximadamente 100 g por

estación, fue fijado con formalina al 5 % y luego

tratado según la metodología estándar señalada

por Boltovskoy (1965) para los foraminíferos

bentónicos.

Las especies determinadas, siguiendo la cla-

sificación de Loeblich € Tappan (1974, 1988),

se entregan ordenadas alfabéticamente según su

género y descritas sólo cuando alguna de ellas no

hubiese sido mencionada anteriormente para Chi-

le. La sinonimia se restringió únicamente a la úl-

tima cita para aguas marinas chilenas o en su

defecto a la cita original. Las especies que no ha-

bían sido fotografiadas con anterioridad al mi-

croscopio electrónico son ilustradas.

RESULTADOS TAXONOMICOS

El número de especies determinadas alcanzó

a un total de 68, pertenecientes a 41 géneros (Ta-

bla ID.

Ammonia beccari Linné

(Lám. 1, Figs. 1-3)

Rotalia beccarii (Linné) Boltovskoy é Zapata,

19809 tele

Dimensiones: diámetro, 0.28-0.84 mm.

Procedencia: ests. 1-5, 8-17.

Angulogerina angulosa (Williamson)

Angulogerina angulosa (Williamson). Zapata é

Alarcón, 1988: 27.

Dimensiones: largo, 0.42-0.68 mm.

Procedencia: ests. 2, 3, 5-7, 9-12, 15, 16.

Angulogerina carinata Cushman

(Lám. 1, Figs. 4 y 5)

Angulogerina carinata Cushman. Boltovskoy éz

Theyer, 1970: 300, lám. 1, fig. 4. :

Dimensiones: largo, 0.40-1.0 mm.

Procedencia ests. 2, 4,.8, IS 146:

Anomalina vermiculata (Orbigny)

Anomalina vermiculata (Orbigny). Zapata «

Alarcón, 1988: 26.

Dimensiones: diámetro, 0.45-1.1 mm.

Procedencia ests il SiS:

Asterigerinata pacifica Uchio

Asterigerinata pacifica Uchio. Zapata $ Alar-

cón, 1988: 18, figs. 1 y 2.

Dimensiones: diámetro, 0.26-0.60 mm.

Procedencia: ests. 9, 11, 17.

Bolivina compacta Sidebottom

(Lám. 1, Figs. 6 y 7)

Bolivina compacta Sidebottom. Boltovskoy é

Zapata, 1980: 195.

Dimensiones : largo, 0.16-0.42 mm.

Procedencia: ests. 8, 9, 11, 14, 16.

Bolivina costata Orbigny

(Lám. 1, Figs. 8 y 9)

Bolivina costata Orbigny. Zapata 8 Rosas, 1976:

Dimensiones: largo, 0.20-0.38 mm.

Procedencia: ests. 1, 3, 4, 11.

Bolivina difformis (Williamson)

(Lám. 1, Figs. 10 y 11)

Textularia variabilis var. difformis Williamson,

1858: 77, lám. 6, figs. 166 y 167.

Descripción: Conchilla lanceolada, comprimida;

margen periférico agudo, con su contorno serra-

do debido a que las últimas cámaras terminan en

dentículos. Paredes brillantes y perforadas. Sutu-

ras deprimidas, nítidas y arqueadas. Abertura

oval, poco alargada.

Dimensiones: largo, 0.21-0.43 mm.

Procedencia: est. 11.

Bolivina pseudoplicata Heron-Allen $ Earland

ECamarres 2yAs)

Bolivina pseudoplicata Heron-Allen é Earland. |

Boltovskoy 8 Theyer, 1970: 306, lám. 1, fig. 15.

Dimensiones: largo, 0.20-0.44 mm.

Procedencia: ests. 5-7, 9, 13, 14.

Foraminíferos bentónicos recientes del sur de Chile: ZAPATA, J., C. ZAPATA Y A. GUTIERREZ

Bolivina punctata Orbigny

Bolivina punctata Orbigny. Marchant, 1993: 64,

lám.1, fig.1.

Dimensiones: largo, 0.34-0.70 mm.

Procedencia: ests. 2, 3, 8, 9, 14, 16, 17.

Buccella peruviana (Orbigny)

(Lám. 2, Figs. 1-3)

Buccella peruviana (Orbigny). Zapata € Alar-

cón, 1988: 26.

Dimensiones: diámetro, 0.28-0.58 mm.

Procedencia: ests. 1-17.

Bulimina patagonica Orbigny

(Lám. 2, Figs. 4 y 5)

Bulimina patagonica Orbigny. Boltovskoy € Za-

pata, 1980: 193.

Dimensiones: largo, 0.18-0.66 mm.

Procedencia: ests. 4-6, 9-11, 14, 15.

Bulimina pulchella Orbigny

(Lám. 2, Figs. 6 y 7)

Bulimina pulchella Orbigny. Boltovskoy 6 The-

yer, 1970: 311, lám. 1, fig. 20.

Dimensiones: largo, 0.20-0.70 mm.

Procedencia: ests. 1-4, 7, 8, 11.

Buliminella elegantissima (Orbigny)

(Lám. 2, Figs. 8-10)

Buliminella elegantissima (Orbigny). Boltovskoy

á Zapata, 1980: 193.

Dimensiones: largo, 0.22-0.48 mm.

Procedencia: ests. 1, 2, 5-7, 9-11, 14-16.

Cancris inflatus (Orbigny)

(Lám. 2, Figs. 11-13)

Cancris inflatus (Orbigny). Zapata 8 Alarcón,

1988: 26.

Dimensiones: diámetro, 0.34-1.2 mm.

Procedencia: ests. 4, 8, 9, 11, 13,15, 17.

Cassidulina crassa Orbigny

Cassidulina crassa Orbigny. Zapata £ Alarcón,

1988: 26.

Dimensiones: diámetro, 0.42-0.68 mm.

Procedencia: ests. 1-17.

Cassidulina laevigata Orbigny

(Lám. 3, Figs. 1 y 2)

Cassidulina laevigata Orbigny. Boltovskoy á

Totah, 1987: 44,

Dimensiones: diámetro, 0.15-0.36 mm.

Procedencia: ests. 1-3, 67 210, 12:13

Cassidulina minuta Cushman

Cassidulina minuta Cushman. Marchant, 1993:

64, lám.1, fig.2.

Dimensiones: diámetro, 0.16-0.35 mm.

Procedencia: ests. 9, 11, 14-16.

Cassidulina pulchella Orbigny

(Lám. 3, Figs. 3 y 4)

Cassidulina pulchella Orbigny. Boltovskoy é

Zapata, 1980: 193.

Dimensiones: diámetro, 0.22-0.45 mm.

Procedencia: ests. 3, 5-7, 9-12, 14.

Cassidulinoides parkerianus (Brady)

Cassidulinoides parkerianus (Brady). Marchant,

1993: 64, lám. 1, fig. 3.

Dimensiones: largo, 0.25-0.60 mm.

Procedencia: 4, 9. 13.16.17.

Cibicides aknerianus (Orbigny)

Cibicides aknerianus (Orbigny). Marchant, 1993:

64, lám.1, fig. 4.

Dimensiones: diámetro, 0.22-0.57 mm.

Procedencia: ests. 1-17.

Cibicides dispars (Orbigny)

Cibicides dispars (Orbigny). Marchant, 1993: 64,

lám.1, fig.5.

Dimensiones: diámetro, 0.23-0.50 mm.

Procedencia: ests. 11, 16.

Cibicides ornatus (Orbigny)

(Lám. 3, Figs. 5-7)

Cibicides ornatus (Orbigny). Zapata «€ Varela,

1975: 46, lámol. 827:

Dimensiones: diámetro, 0.38-0.82 mm.

Procedencia: ests. 1-7, 9, 12, 14, 15.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Cibicides vartabilis (Orbigny)

Cibicides variabilis (Orbigny). Marchant, 1993:

64, lám. 1, fig. 6.

Dimensiones: diámetro (en regulares), 0.36-0.72

mm, largo (en irregulares), 0.72-1.5 mm.

Procedencia: ests. 1-13, 17.

Cornuspira involvens (Reuss)

Cornuspira involvens (Reuss). Boltovskoy $ Za-

pata, 1980: 193.

Dimensiones: diámetro, 0.20-0.42 mm.

Procedencia: ests. 1, 5-7, 9-11, 14, 16, 17.

Cribrorotalia meridionalis (Cushman « Kellet)

Eponides meridionalis (Cushman dz Kellet).

Marchant, 1993: 65, lám. 1, fig. 8.

Dimensiones: diámetro, 0.30-0.90 mm.

Procedencia: ests. 1-17.

Cribrostomoides hancocki (Cushman «

McCulloch)

(Lám. 3, Figs. 8 y 9)

Cribrostomoides hancocki (Cushman € MecCu-

lloch). Zapata 8 Alarcón, 1988: 27.

Dimensiones: diámetro, 0.25-0.48 mm.

Procedencia: ests. 3, 9-11, 14.

Cribrostomoides subinvolutum (Cushman «

McCulloch)

(Lám. 3, Figs. 10 y 11)

Cribrostomoides subinvolutum (Cushman € Mec-

Culloch). Boltovskoy £ Zapata, 1980: 194.

Dimensiones: diámetro, 0.46-1.1 mm.

Procedencia: ests. 1, 2, 5-7, 9-11, 14, 17.

Cyclammina cancellata Brady

(Lám. 3, Figs. 12 y 13)

Cyclammina cancellata Brady. Theyer, 1971:

309, fig. 2.

Dimensiones: diámetro, 0.90-2.2 mm.

Procedencia: ests. 4, 8-10.

Dentalina consobrina emaciata Reuss

(Lám. 3, Figs. 14 y 15)

Dentalina consobrina emaciata Reuss. Boltovs-

koyisaIheyer1970:323 lám0 ie 3

Dimensiones: largo, 2.0-3.8 mm.

Procedencia: ests. 9, 10, 14.

Discorbis corus (Orbigny)

(Lám. 4, Figs. 1 y 2)

Discorbis corus (Orbigny). Boltovskoy € Zapa-

ta, 1980: 196.

Dimensiones: diámetro, 0.25-0.70 mm.

Procedenciatesis 2 ODA

Discorbis peruvianus (Orbigny)

Discorbis peruvianus (Orbigny). Marchant,

ILLES, Item, 2, 102,

Dimensiones: diámetro, 0.40-0.48 mm.

Brocedenciates MS SSI

Ehrenbergina pupa (Orbigny)

(Lám. 4, Figs. 3-5)

Ehrenbergina pupa (Orbigny). Boltovskoy éz Za-

pata, 1980: 193.

Dimensiones: largo, 0.22-0.60 mm.

Procedenciasests laa

Elphidium articulatum (Orbigny)

(Lám. 4, Figs. 6 y 7)

Elphidium articulatum (Orbigny). Zapata 4

Alarcón, 1988: 26.

Dimensiones: diámetro, 0.22-0.52 mm.

Procedencia: ests. 1, 2, 6-14, 17.

Elphidium macellum (Fichtel 8 Moll)

Elphidium macellum (Fichtel £ Moll). Marchant,

1993: 65, lám. 2, fig. 4.

Dimensiones: diámetro, 0.32-0.86 mm.

Procedencia: ests. 9-12, 14.

Elphidium magellanicum Heron-Allen $

Earland

(Lám. 4, Figs. 8 y 9)

Elphidium magellanicam Heron-Allen 4% Ear-

land. Zapata £ Alarcón, 1988: 26.

Dimensiones: diámetro, 0.20-0.44 mm.

Procedencia: ests. 9, 12-17.

Foraminíferos bentónicos recientes del sur de Chile: ZAPATA, J., C. ZAPATX Y A. GUTIERREZ

Epistominella exigua (Brady)

Epistominella exigua (Brady). Zapata € Alarcón,

1988: 26.

Dimensiones: diámetro, 0.15-0.32 mm.

Procedencia: est. 11.

Fissurina lucida (Williamson)

(Lám. 4, Figs. 10 y 11)

Fissurina lucida (Williamson). Boltovskoy é

Zapata, 1980: 194.

Dimensiones: largo, 0.14-0.30 mm.

Procedencia: ests. 2, 4-6, 9, 10, 13, 14, 16.

Glabratella pileolus (Orbigny)

Glabratella pileolus (Orbigny). Zapata, 1990:

147, figs. 3 y 4.

Dimensiones: diámetro, 0.20-0.42 mm.

Procedencia: ests. 1, 4-7, 9-12, 14, 17.

Guttulina problema Orbigny

(Lám. 5, Figs. 1-3)

Guttulina problema Orbigny. Boltovskoy $ Za-

pata, 1980: 194.

Dimensiones: largo, 0.35-0.65 mm.

Procedencia: ests. 4-7, 9, 11, 12, 14, 16.

Hanzawaia grateloupi (Orbigny)

(Lám. 4, Figs. 12-14)

Nonion grateloupi (Orbigny). Boltovskoy $ Za-

pata, 1980: 195.

Dimensiones: diámetro, 0.35-0.72 mm.

Procedencia: ests. 1, 6, 7, 9, 14-17.

Lagena aspera Reuss

(Lám. 5, Figs. 4 y 5)

Lagena aspera Reuss. Boltovskoy € Theyer,

STO: 33s lám: 3, fis. 15:

Dimensiones: largo, 0.35-0.60 mm.

Brocedencia: ests: 5, 8, 113, 15:

Lagena laevis (Montagu)

(Lám. 5, Fig. 6)

Lagena laevis (Montagu). Boltovskoy £ Zapata,

1980: 195.

Dimensiones: largo, 0.30-0.42 mm.

Procedencia: ests. 1-3, 6, 9, 13, 16, 17.

Lagena striata (Orbigny)

Lagena striata (Orbigny). Marchant, 1993: 65,

lám. 2, fig. 7.

Dimensiones: largo, 0.28-0.52 mm.

Procedencia: ests. 5, 7, 8, 12-14, 17.

Melonis affine (Reuss)

Nonion affine (Reuss). Boltovskoy é Totah,

1987: 44, fig. 16.

Dimensiones: diámetro, 0.22-0.48 mm.

Procedencia: ests. 1, 5-7, 9-12, 14, 17.

Miliammina fusca (Brady)

(Lám. 5, Figs. 7-9)

Miliammina fusca (Brady). Boltovskoy $ Zapa-

ta, 1980: 193.

Dimensiones: largo, 0.25-0.68 mm.

Procedencia: ests. 1, 2, 5, 9, 10, 14, 17.

Miliolinella lutea (Orbigny)

(Lám. 5, Figs. 10-12)

Miliolinella lutea (Orbigny). Zapata $ Alarcón,

1983327:

Dimensiones: largo, 0.30-0.56 mm.

Procedencia: ests. 1, 3-5, 7-11, 14-17.

Miliolinella subrotunda (Montagu)

Miliolinella subrotunda (Montagu). Marchant,

1993: 65, lám. 4, fig. 4.

Dimensiones: largo, 0.23-0.66 mm.

Procedencia: ests. 1, 3, 5-14, 16.

Nonionella auris (Orbigny)

(Lám. 5, Figs. 13-15)

Nonionella auris (Orbigny). Zapata £ Alarcón,

1988: 27.

Dimensiones: largo, 0.20-0.48 mm.

Procedencia: ests. 1-3, 5-14, 17.

Nonionella chiliensis Cushman « Kellett

(Lám. 6, Figs. 1-3)

Nonionella chiliensis Cushman « Kellett. Zapata

£ Alarcón, 1988: 27.

Dimensiones: largo, 0.18-0.65 mm.

Procedencia: ests. 1, 3-9, 11-15, 17.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Oolina borealis Loeblich € Tappan

(Lám. 6, Figs. 4 y 5)

Oolina borealis Loeblich $£ Tappan. Boltovskoy

$ Theyer, 1970: 349, lám. 4, fig. 11.

Dimensiones: largo, 0.22-0.29 mm.

Procedenciasests2 0 109 IS Tlo:

Oolina hexagona (Williamson)

Oolina hexagona (Williamson). Marchant, 1993:

65, lám. 2, fig. 9.

Dimensiones: largo, 0.20-0.25 mm.

Procedencia: ests. 6, 11, 12, 14, 15.

Oolina inornata Orbigny

(Lám. 6, Figs. 6 y 7)

Oolina inornata Orbigny. Boltovskoy € Theyer,

1970: 350, lám. 4, fig. 14.

Dimensiones: largo, 0.32-0.40 mm.

Brocedenciaes is 2 OOO:

Oolina vilardeboana Orbigny

Oolina vilardeboana Orbigny. Marchant, 1993:

65, lám.3, fig.2.

Dimensiones: largo, 0.23-0.40 mm.

Brocedencia esti iS

Patellina corrugata Williamson

Patellina corrugata Williamson. Marchant,

1993: 66, lám. 3, fig. 3.

Dimensiones: diámetro, 0.10-0.28 mm.

Procedencia: ests. 1, 4, 5, 9-11, 13-17.

Poroeponides lateralis (Terquem)

(Lám. 6, Figs. 8 y 9)

Poroeponides lateralis (Terquem). DiSalvo ef

al., 1988: 455.

Dimensiones: largo, 0.40-1.1 mm.

Procedencia: est o Ao:

Pseudononion japonicum Asano

(Lám. 6, Figs. 10-12)

Pseudononion japonicum Asano. Boltovskoy é

Zapata, 1980: 195.

Dimensiones: largo, 0.30-0.65 mm.

Procedencia: ests. 2, 6, 7, 9, 14, 15.

Pyrgo elongata (Orbigny)

Pyrgo elongata (Orbigny). Zapata € Alarcón,

1988:27, figs. 19:y 20:

Dimensiones: largo, 0.32-0.58 mm.

Procedencia: ests. 11-13, 16, 17.

Quinqueloculina seminulum (Linné)

Quinqueloculina seminulum (Linné). Marchant,

1993: 66, lám. 4, figs. 1 y 2.

Dimensiones: largo, 0.32-1.2 mm.

Procedencia: ests. 1-17.

Robulus reniformis (Orbigny)

(Lám. 6, Figs. 13 y 14)

Robulus cf. reniformis (Orbigny). Boltovskoy é

Theyer, 1970: 356, lám. 4, fig. 19.

Dimensiones: largo, 0.50-0.58 mm.

Procedencia: ests. 4, 5, 10, 14.

Robulus rotulatus (Lamarck)

(Lám. 7, Figs. 1 y 2)

Robulus rotulatus (Lamarck). Zapata $ Alarcón,

1988: 27.

Dimensiones: largo, 0.45-1.8 mm.

Procedencia: ests. 1-3, 6, 12, 14, 16, 17.

Textularia gramen Orbigny

(Lám. 7, Figs. 3 y 4)

Textularia gramen pseudogramen Chapman é

Parr. Boltovskoy 4 Theyer, 1970: 361, lám. 5,

figs. 1 y 2.

Dimensiones: largo, 0.75-1.2 mm.

Procedencia: ests. 2, 9, 10.

Triloculina trigonula (Lamarck)

(Lám. 7, Figs. 5-7)

Miliolites trigonula Lamarck, 1804: 35.

Descripción: Conchilla subcircular u oval, de

sección transversal triangular; margen periférico

redondeado. Cámaras robustas, convexas. Pare-

des gruesas, porcelanoides. Suturas deprimidas.

Abertura redondeada, con diente simple o bífido.

Dimensiones: largo, 0.38-0.72 mm.

Procedencia: ests. 3, 4, 8, 14.

Foraminíferos bentónicos recientes del sur de Chile: ZAPATA, J., C. ZAPATA Y A. GUTIERREZ

Trochammina inflata (Montagu)

Trochammina inflata (Montagu). Zapata £ Alar-

cón, 1988: 27, figs. 29 y 30.

Dimensiones: diámetro, 0.30-0.62 mm.

Procedencia: ests. 5, 6, 8, 9, 13, 16, 17.

Trochammina ochracea (Williamson)

(Lám. 7, Figs. 8 y 9)

Trochammina ochracea (Williamson). DiSalvo

et al., 1988: 455.

Dimensiones: diámetro, 0.20-0.36 mm.

Procedencia: ests. 1-3, 5, 9-12, 14, 17.

Trochammina plana Egger

Trochammina plana Egger. Marchant, 1993: 66,

lám. 4, fig. 6.

Dimensiones: diámetro, 0.22-0.30 mm.

Procedencia: ests. 1, 5, 9-11, 14-16.

Trochammina squamata Jones $: Parker

(Lám. 7, Figs. 10 y 11)

- Trochammina squamata Jones € Parker. Bol-

tovskoy $ Zapata, 1980: 195.

Dimensiones: diámetro, 0.18-0.32 mm.

Procedencia: ests. 1-3, 5, 9-12, 14.

Uvigerina peregrina Cushman

Uvigerina peregrina Cushman. Boltovskoy é

Totah, 1987: 44, fig. 17.

Dimensiones: largo, 0.38-0.56 mm.

Procedencia: ests. 7, 9, 13, 14, 16.

CONCLUSIONES

La foraminiferofauna bentónica correspon-

dió a 59 especies calcáreas, de las cuales Bolivi-

na difformis (Williamson) y Triloculina

trigonula (Lamarck) son mencionadas como nue-

vas para aguas chilenas; y a 9 especies aglutina-

das: Cribrostomoides hancocki (Cushman «

McCulloch), C. subinvolutum (Cushman 6 Mec-

Culloch), Cyclammina cancellata Brady, Miliam-

mina fusca (Brady), Textularia gramen Orbigny,

Trochammina inflata (Montagu), T. ochracea

(Williamson), 7. plana Egger y T. squamata Jo-

nes áz Parker.

Basados en las conclusiones hechas por Bol-

tovskoy 8 Theyer (1970) en su trabajo dedicado

a los foraminíferos de Chile Central, las especies

estudiadas deben considerarse como pertenecien-

tes al tipo de agua "templado-fría" (Asterigerina-

ta pacifica, Cassidulina crassa, C. laevigata,

Cyclammina cancellata, Elphidium macellum,

etc.), con presencia de ciertas especies de agua

"templado-cálida" (Angulogerina carinata, Buli-

mina pulchella, Cibicides ornatus y Glabratella

pileolus) y de otras cosmopolitas (Cornuspira in-

volvens, Miliolinella subrotunda, Melonis affine,

Quinqueloculina seminulum y Trochammina

ochracea).

AGRADECIMIENTOS

Nuestros agradecimientos al jefe del Labo-

ratorio de Microscopía Electrónica de la Univer-

sidad de Concepción, por todas las facilidades

otorgadas para la utilización del Microscopio

Electrónico de Barrido; a muchos alumnos y ex-

alumnos de la carrera de Pedagogía en Biología y

Ciencias de la Universidad de Los Lagos, por su

desinteresada cooperación en la recolección de

las muestras de sedimento utilizadas en el pre-

sente estudio; y al Depto. de Investigación de la

Universidad de Los Lagos por su constante apo-

yo.

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Foraminíferos bentónicos recientes del sur de Chile: ZAPATA, J., C. ZAPATA Y A. GUTIER

Lamina 1. Fig. 1. Ammonia beccarii x 54, lado espiral. Fig. 2. A. beccarii x 54, lado umbilical. Fig. 3. A. beccarii x

S6; vista frontal. Fig. 4. Angulogerina carinata Xx 77, vista lateral. Fig. 5. A. carinata x 89, vista apertural. Fig. 6.

Bolivina compacta x 175, vista lateral. Fig. 7. B. compacta x 350, vista apertural. Fig. 8. Bolivina costata x 189,

vista lateral. Fig. 9. B. costata x 323, vista apertural. Fig. 10. Bolivina difformis x 169, vista lateral. Fig. 11. B.

difformis x 339, vista apertural. Fig. 12. Bolivina pseudoplicata x 175, vista lateral. Fig. 13. B. pseudoplicata x 269,

vista apertural.

Gayana Zool. 59(1),

Lamina 2. Fig. 1. Buccella peruviana x 114, lado espiral. Fig. 2. B. peruviana X 121, lado umbilical. Fig. 3. B. peru-

viana X 148, vista frontal. Fig. 4. Bulimina patagonica x 148, vista lateral. Fig. 5. B. patagonica x 148, vista lateral.

Fig. 6. Bulimina pulchella x 108, vista lateral. Fig. 7. B. pulchella x 87, vista lateral. Fig. 8. Buliminella elegantissi-

ma Xx 168, lado espiral. Fig. 9. B. elegantissima x 175, lado umbilical. Fig. 10. B. elegantissima x 168, lado umbili-

cal. Fig. 11. Cancris inflatus x 41, lado espiral. Fig. 12. C. inflatus x 41, lado umbilical. Fig. 13. C. inflatus x 41,

vista frontal.

Foraminíferos bentónicos recientes del sur de Chile: Zapata, J., C. ZAPATA Y A. GUTIERREZ

Lamina 3. Fig. 1. Cassidulina laevigata x 115, lado espiral. Fig. 2. C. laevigata x 115. lado umbilical. Fig. 3. Cassi-

dulina pulchella x 135, lado espiral. Fig 4. C. pulchella, 135, lado umbilical. Fig. 5. Cibicides ornatus x 89, lado

espiral. Fig. 6. C. ornatus x 89, lado umbilical. Fig. 7. C. ornatus x 108, vista frontal. Fig. 8. Cribrostomoides han-

cocki x 116, vista lateral. Fig. 9. C. hancocki x 137, vista frontal. Fig. 10. Cribrostomoides subinvolutum x 35. vista

lateral. Fig. 11. C. subinvolutum x 41, vista frontal. Fig. 12. Cyclammina cancellata x 24. vista lateral. Eo ASC:

cancellata x 31, vista frontal. Fig. 14. Dentalina consobrina emaciata x 14, vista lateral. Fig. 15. D. consobrina

emaciata x 137, vista apertural.

Lamina 4. Fig. 1. Discorbis corus x 89, lado espiral. Fig. 2. D. corus x 124, lado umbilical. Fig. 3. Ehrenbergina

pupa x 117, lado espiral. Fig. 4. E. pupa x 110, lado umbilical. Fig. 5. E. pupa x 124, vista lateral. Fig. 6. Elphi-

dium articulatum x 151, vista lateral. Fig. 7. E. articulatum x 178, vista frontal. Fig. 8. Elphidium magellanicum Xx

147, vista lateral. Fig. 9. E. magellanicum x 161, vista frontal. Fig. 10. Fissurina lucida x 174, vista lateral. Fig 118

F. lucida x 268, vista apertural. Fig. 12. Hanzawaia grateloupi x 109, vista lateral. Fig. 13. H. grateloupi x 92, vista

lateral. Fig. 14. A. grateloupi x 123, vista frontal.

Foraminíferos bentónicos

Lamina 5. Fig. 1. Guttulina problema x 115, vista lateral. Fig. 2. G. problema x 102, vista lateral. Fig. 3. G. proble-

ma Xx 122, vista apertural. Fig. 4. Lagena aspera x 163, vista lateral. Fig. 5. L. aspera x 272, vista apertural. Fig. 6.

Lagena laevis x 163, vista lateral. Fig. 7. Miliammina fusca x 109, vista lateral. Fig. 8. M. fusca x 136, vista lateral.

Fig. 9. M. fusca x 272, vista apertural. Fig. 10. Miliolinella lutea x 231, vista lateral. Fig. 11. M. lutea x 258, vista

lateral. Fig. 12. M. lutea x 353, vista apertural. Fig. 13. Nonionella auris x 96, lado espiral. Fig. 14. N. auris x

lado umbilical. Fig. 15. N. auris x 96, vista frontal.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Lamina 6. Fig. 1. Nonionella chiliensis x 82, lado espiral. Fig. 2. N. chiliensis x 75, lado umbilical. Fig. 3. N. chi-

liensis x 110, vista apertural. Fig. 4. Oolina borealis x 192, vista lateral. Fig. 5. O. borealis x 205, vista apertural.

Fig. 6. Oolina inornata x 174, vista lateral. Fig. 7. O. inornata x 174, vista apertural. Fig. 8. Poroeponides lateralis

x 40, lado espiral. Fig. 9. P. lateralis x 40, lado umbilical. Fig. 10. Pseudononion japonicum X 110, lado espiral.

Fig. 11. P. japonicum x 131, lado umbilical. Fig. 12. P. japonicum x 137, vista apertural. Fig. 13. Robulus renifor-

mis x 102, vista lateral. Fig. 14. R. reniformis x 48, vista apertural.

Foraminíferos bentónicos recientes del sur de Chile: ZAPATA, J., C. ZAPATA Y A. GUTIERREZ

Lamina 7. Fig. 1. Robulus rotulatus x 43, vista lateral. Fig. 2. R. rotulatus x 54, vista apertural. Fig. 3. Textularia

gramen x 48, vista lateral. Fig. 4. T. gramen x 113, vista apertural. Fig. 5. Triloculina trigonula x 99, vista lateral.

Fig. 6. T. trigonula x 85, vista lateral. Fig. 7. T. trigonula x 184, vista apertural. Fig. 8. Trochammina ochracea x

106, lado espiral. Fig. 9. T. ochracea x 120, lado umbilical.Fig. 10. Trochammina squamata X 117, lado espiral.

Fig. 11. 7. squamata x 117, lado umbilical.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Tabla I. Muestras estudiadas y sus respectivas estaciones, coordenadas geográficas y profundidades.

ESTACION LOCALIDAD LATITUD LONGITUD PROFUNDIDAD

SUR OESTE (m)

1 BAHIA MAIQUILLAHUE 3926' TIAS: OSO

2 BAHIA CORRAL SOL 7324 12

3 CALETA HUEICOLLA 40%09' 73%40' TOS

4 RADA BANDERAS 40%25' 73%47' Ol

e) RADA MANZANO 40%33' 73%44' 14, 18, 20

6 BAHIA MANSA 40035" SRA) S, 6,14

y MUICOLPUE 40%36' 73%45' DL

8 BAHIA SAN PEDRO 40055" TS 4, 6,12

=) CANAL TENGLO 41%30' 73%00' IAS

10 BAHIA CHINCUI 41%31' TSRO2; DO

11 BAHIA METRI 41%37' 72%41' OEEZIO 0

12 BAHIA MAULLIN 41%38' 73%40' A

5) CALBUCO 41%47' TEADTA 3, 4

14 ISLA PULUQUI 41%47' 73%05' A

IS BAHIA PARGUA 41%48' TSE" 6, 8

16 BAHIA CHACAO 41%50' 13728: SES

OLA Z MES

17 BAHIA ANCUD 4152! 73% 7

Feraminíferos bentónicos recientes del sur de Chile: ZAPATA, J., C. ZAPATA Y A. GUTIERREZ

Tabla II. Distribución de las especies de foraminíferos en el área de estudio (*: indica presencia; -: indica posible

presencia).

ESPECIESIESTACIONES A A o O LL IL

Ammonia beccaril A A A A A

Angulogerina angulosa IR O E E RI O

Angulogerina carinata E A e E pra Ar e ld se E A E

Anomalina vermiculata E ES

Asterigerinata pacifica AT DAA AOS A

Bolivina compacta E NEIRA A A

Bolivina costata e a ea E e

Bolivina difformis sk

Bolivina pseudoplicata O

Bolivina punctata E E A

Buccella peruviana E II II A

Bulimina patagonica E O E E

Bulimina pulchella A A ES EI

Buliminella elegantissima E

Cancris inflatus e E RE

Cassidulina crassa * + ES ES ES ES ES ES + ES ES ES ES ES ES ES ES

Casidulina laevigata 2 E Ar A

Cassidulina minuta E A e E ES

Cassidulina pulchella ld id A

Cassidulinoides parkerianus E EMI A

Cibicides aknerianus a j > ; >

Cibicides dispars a

Cibicides ornatus A E o E E

Cibicides variabilis e E E O E O A A E 2 E

Cornuspira involvens a Tn e EA a A o A

Cribrorotalia meridionalis E ES E EEE

Cribrostomoides hancocki A E SS

Cribrostomoides subinvolutum A ar E REL E Es ES ES e ES OS

Cyclammina cancellata ara

Dentalina consobrina emaciata Aa

Discorbis corus vd oa O dE EE a

Discorbis peruvianus A A o al AR

Ehrenbergina pupa AS E ll DE

Elphidium articulatum A A A EN E

Elphidium macellum EE ES ES

Elphidium magellanicum EIN O

Epistominella exigua

Fissurina lucida das + laa E

Glabratella pileolus E a es E E E ES

Guttulina problema A E IE TIE EE

Hanzawalia grateloupi e as dt E. E O E ESTO ES

Lagena aspera o A A

Lagena laevis e E A E A E

Lagena striata A E o

Melonis affine A E E O TO II. AS

Miliammina fusca e E LS A E

Miliolinella lutea E E E AR E E O E

Miliolinella subrotunda E ES IA A EE

Nonionella auris E A OS SAA SI 0 ES

Nonionella chiliensis ER E e MES RE ST A OS

Oolina borealis E A e

Oolina hexagona O A TD e

Oolina inornata A E A E E a

Gayana Zool. 59(1), 1995.

TABLA II. Continuación.

ESPECIESIESTACIONES

Oolina vilardeboana

Patellina corrugata

Poroeponides lateralis

Pseudononion japonicum

Pyrgo elongata

Quinqueloculina seminulum

Robulus reniformis

Robulus rotulatus

Textularia gramen

Triloculina trigonula

Trochammina inflata

Trochammina ochracea

Trochammina plana

Trochammina squamata

Uvigerina peregrina

a LS

* zl E ds ES Z E

ES ES + + e “ ES *

* * a * E A ES *

ES ES Xx Xx

ES + S z e pe

ES * E E ES a. E ES

E e Es 2 E = E *

* * a pl Ss * E

* * E * *

xXx x= EE E ze par 2 +

A IR A

ES * * *

¡ALAS SAI

= ES S S Ea ES lE *

ES * e * * + ES ES

= ES = z * a *

> = E E * *

ES * + 5h *

ES Es nl = *

ee E * A * E * *x

= S E Z *

S E Es A Y + *

* * * ee ES ze ES ES

a AN 2 ER

x xx *

Gayana Zool. 59(1): 41-46, 1995.

ISSN 0016-531X

DESCRIPCION DEL HUEVO, LARVA EN PRIMER ESTADIO Y

GENITALIA DE ADETOMERIS MICROPHTHALMA (PH.)

(LEPIDOPTERA: SATURNIIDAE)*

DESCRIPTION OF EGG, FIRST STATE LARVAE AND

GENITALIA OF ADETOMERIS MICROPHTHALMA (PH.)

(LEPIDOPTERA: SATURNIIDAE)

M. E. Hormazábal y María E. Navarro**

RESUMEN

Se describe el huevo, larva en primer estadio y la geni-

talia del macho y hembra de Adetomeris microphthal-

ma (Ph.) (Lepidoptera: Saturniidae).

PALABRAS CLAVES: huevo, larva, genitalia, A. microph-

thalma (Ph.), Lepidoptera, Saturniidae, Chile.

INTRODUCCION

Adetomeris microphthalma (Ph.) es un lepi-

dóptero satúrnido defoliador, que se distribuye

desde Cautín a Valdivia (Ureta, 1942). Existe in-

formación acerca del imago entregada por Iz-

quierdo (1895), donde describe la morfología

externa y maculación alar de la hembra; Ureta

(1942), morfología externa de la hembra y el ma-

cho, junto con la distribución geográfica de la es-

pecie; sin embargo no se conocen sus estados

inmaduros (Cerda et. al, 1985). Es por ello que el

objetivo de este trabajo es entregar la descripción

del huevo, larva en primer estadio y genitalia de

ambos sexos, para así contribuir a un mayor co-

nocimiento de esta especie.

*Presentado en el XVI Congreso Nacional de Entomo-

logía.

**Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción. Casilla 2407, Concepción, Chile.

ABSTRACT

The egg, first state larva and female and made genita-

lia of A. microphthalma (Ph.) (Lepidoptera: Saturnii-

dae).

KEYWORDS: egg, larva, genitalia, A. microphthalma

(Ph.), Lepidoptera, Saturniidae, Chile.

MATERIALES Y METODOS

El material utilizado para realizar las des-

cripciones se obtuvo a partir de un ejemplar hem-

bra adulto, recolectado en noviembre de 1993, en

el Barrio Universitario, Concepción (36%50' S,

7250" W) Chile. En laboratorio, el ejemplar de

A. microphthalma (Ph.) se mantuvo en un frasco

de crianza para la obtención de huevos y larvas

en primer estadio (diciembre 1993); desafortuna-

damente el resto del desarrollo ontogénico no se

logró obtener debido al desconocimiento de los

hábitos alimenticios de la larva.

Tanto el huevo como la larva son analizados

y dibujados bajo lupa estereoscópica Carl Zeiss

con cámara clara y fotografiados en Microscopio

Electrónico de Barrido, Autoscanning ETEC de

la Universidad de Concepción.

La preparación de la genitalia del macho y

la hembra se hizo desprendiendo el abdomen, el

cual se dejó remojar en alcohol etílico 70% (1-2

minutos); luego se colocó en KOH 10% w/v y

dejado en Baño María por un período de 10 mi-

nutos. Finalmente el abdomen fue lavado en agua

corriente y se disecaron, despegando las estructu-

ras genitales y manteniéndolas en alcohol 70%

para ser dibujadas bajo lupa estereoscópica con

Gayana Zool. 59(1), 1995.

cámara clara. Luego se guardó las genitalias en

frascos, los cuales se mantuvieron unidos al espe-

cimen. El material analizado corresponde al

ejemplar hembra recolectada, y la genitalia del

macho se obtuvo de un ejemplar recolectado en

Angol, 20 de marzo de 1952, D.S. Bullock.

ABREVIATURAS USADAS:

IAS : setas adfrontal 1, 2, 3

aa : apófisis anteriores

ae : aeropilas

aed : aedeagus

ant : antenas

ap : apófisis posteriores

be : bursa copulatrix

co : costa

cor : Cornutl

Cb : crochet

ds : ductus seminalis

ec : ectodene

esp : espinerete

le : lóbulo costal de la valva

lovp : lóbulos del ovipositor

md : mandíbulas

mi : micropila

oc : ocelos

pl : palpos labiales

Sl : seta stematal 1

sac : saculus

scol : scolus

soc : SOCIUS

sp : espuripedio

st : sterigma

tr : transtilla

un : UNCUS

val : valva

yX : yuxta

RESULTADOS

IMAGO:

DIAGNOSIS: macho y hembra (Fig.1) amarillo

ocre; ápice de las alas anteriores terminado en

punta; línea subterminal externa y mancha orbi-

cular representada por dos puntos discoidales,

gris. Alas posteriores con mancha discal negra

con pequeño centro blanco; línea subterminal

castaño rojiza, va desde el ángulo anterior exter-

no hasta la parte media del borde interno, descri-

biendo un arco convexo hacia el termen.

EXPANSION ALAR: macho, 31-52 mm.; hembra: 57

mm.

GENITALIA DEL MACHO (Fig. 2):

Uncus romo, subcuadrangular, fuertemente quiti-

nizado, con bordes ondulados; socius presente;

valvas subrectangulares, ápice con prominencias

dentadas, quitinizadas, dorsalmente, a ambos la-

dos del uncus presenta dos lóbulos costales con

escotadura externa, alcanzando el borde posterior

de éste; transtilla suboval, con escotadura ante-

rior; yuxta con borde posterior cuadrangular. Ae-

deagus ligeramente curvado, ductus seminalis

emerge en el extremo anterior de la funda; vesica

armada con un cornuti digitiforme en el cuarto

terminal de ésta.

GENITALIA DE LA HEMBRA (Fig. 3):

Bursa copulatrix pequeña, globular, membrano-

sa; signum ausente, ductus seminalis emerge en

su región posterior, ductus bursae seis veces más

corto que la bursa copulatrix; sterigma muy quiti-

nizado; apófisis posteriores largas, sobrepasando

anteriormente a la bursa copulatrix, con ápice

globoso; apófisis anteriores más quitinizadas, ter-

minadas en punta, ligeramente más cortas que las

apófisis posteriores.

DISTRIBUCION: Cautín a Valdivia. Nuevo re-

gistro para Chile: Concepción.

HUEVO (Figs. 4 -9):

Subglobosos (Fig. 4), de color verde cuando son

recién ovipuestos por la hembra, luego se decolo-

ran a blanco. 0.6 mm de diámetro y 1.7mm. de

alto aproximadamente. Presencia de aeropilas

aisladas en la región lateral del cuerpo (Fig. 5);

en el límite entre el área polar y el resto del hue-

vo se observan más numerosas y distribuidas

irregularmente (Fig. 6). Hacia los bordes de la re-

gión polar van apareciendo los límites de las cel-

das, apreciándose las aeropilas en su interior

(Fig. 7). El área micropilar (Figs. 8 y 9), ubicada

en la región polar, presenta 9 a 10 celdas prima-

rias y 15 a 16 secundarias, siendo la relación de

proporción entre la roseta central y la secundaria

desllt6:

Son ovipuestos en hilera o en grupos, desnu-

dos, con 60 huevos aproximadamente, adheridos

Descripción huevo, larva y genitalia Adetomeris microphthalma: M. E. HorMAzaBAL Y M. E. NAVARRO

fuertemente al sustrato mediante una sustancia

cementante.

LARVA PRIMER ESTADIO (Figs. 10-15)

LONGITUD DEL CUERPO: 4.1 mm; ancho máximo

0.8 mm. Cabeza y patas torácicas castaño claro.

Tegumento corporal blanquizco, con tres bandas

negruzcas: una mediodorsal y dos laterales. Sco-

lus blanquizcos con la mitad distal negruzca.

CABEZA HIPOGNATA (Fig.10); área ocular con oce-

los dispuestos en forma de un dos invertido; seta

Sl (stematal 1) en la línea que une los ocelos 1 y

IV, y II y IV; la línea que une Al, A2 y A3 for-

ma una ángulo recto. Complejo hipofaríngeo

(Fig.11) en contacto con los palpos labiales; pal-

pos labiales con tres segmentos, el basal es cinco

veces más largo que el terminal, ambos con una

cerda cada uno, donde la del segmento distal es

un tercio más grande que la del basal; espinerete

con forma suboval con engrosamiento en su por-

ción media, orificio ventral correspondiente al tu-

bo del espinerete, cuya abertura es subterminal,

con corte diagonal; placa basal subtriangular, na-

ce en la base del espinerete. Labro con tres setas

mediales que forman un ángulo recto, y tres late-

rales; mandíbulas (Fig.12) subcuadrangulares,

con cuatro dientes, presenta dos cerdas en el mar-

gen externo.

TORAX Y ABDOMEN (Fig.13) CON SCOLUS; cada sco-

lus con el cuarto basal unido, luego se divide en

dos ramas, las cuales se adelgazan en sus 2/3 dis-

tales. Cada scolus (Fig.14) se encuentra formado

por numerosos segmentos. Espuripedios (Fig.15)

presentes en los segmentos abdominales tres al

seis y en el décimo, llevan crochets uniseriados,

uniordinales, dispuestos en la región anterior,

posterior y lateral externa de cada espuripedio.

AGRADECIMIENTOS

A la Dirección de Investigación de la U. de

Concepción (Proyecto D.1.94.113.34-1). Al Dr.

Andrés Angulo O., por la revisión crítica del ma-

nuscrito, el cual fue presentado en el XVI Con-

greso Nacional de Entomología, noviembre

1994. Al personal del Laboratorio de Microsco-

pía Electrónica de la Universidad de Concepción

por las fotografías SEM.

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Gayana Zool. 59(1): 47-71, 1995.

ISSN 0016-531X

CARACTERISTICAS GENETICAS DE RECURSOS ACUATICOS DE LA

OCTAVA REGION DEL BIOBIO, CHILE. CONTRIBUCION A LA

CONSERVACION DE LA BIODIVERSIDAD

GENETIC CHARACTERIZATION OF AQUATIC ORGANISM FROM THE

BIOBIO REGION, CHILE: A CONTRIBUTION TO TITS

BIODIVERSITY CONSERVATION

Alay, F.*; H. Campos **; J. Gavilán*; F. González*; C. Valenzuela,*;

P.M. Bisol*** y J. Cabello*

RESUMEN

Se comunican los resultados de caracterizar genética-

mente especies acuáticas marinas y dulceacuícolas del

río Biobío y la Bahía de San Vicente de la Octava Re-

gión que estan sometidas a influencia antrópica y/o la

variabilidad natural del ecosistema. La estructura ge-

nética se examina mediante electroforesis de isoen-z1-

mas y estudios cromosómicos que incluyen

descripción del cariotipo y test de micronúcleo (MN).

El método electroforético se aplica a poblaciones de

los siguientes moluscos: Concholepas concholepas,

Tagelus dombeyii y Chilina dombeyana y a peces del

Género Genypterus maculatus. El método cromosómi-

co se aplica a la detección de clastogenicidad mediante

el test de micronúcleo en peces autóctonos (4 especies)

e introducidos (2 especies) del río Biobío. Este mismo

método se aplica a la descripción del cariotipo de otras

2 especies autóctonas del mismo río Biobío. Los resul-

tados de la electroforesis indican que la estructura ge-

nética poblacional de Concholepas y Chilina esta

sometida a stress ambiental, no así la de Tagelus y

Genypterus. El test de MN revela co-rrelación entre su

número y la contaminación acuática, lo que se ve con-

firmado por análisis de metales pesados en diversos te-

jidos de peces y moluscos. La descripción del

cario-tipo de las 2 especies autóctonas examinadas no

revela daño genético aparente.

PALABRAS CLAVES: Recursos genéticos. Biodiversidad.

Test de micronúcleo. Isoenzimas. Contaminación.

“Laboratorio de Genética, Depto. Biología Molecular

Facultad de Ciencias Biológicas y Centro EULA-

Chile, Universidad de Concepción, Chile.

**Laboratorio de Limnología, Universidad Austral de

Chile

***+*I aboratorio de Genética, Universidad de Padua,

Italia.

ABSTRACT

The genetic characterization of aquatic organisms

from the Biobío river and San Vicente Bay, exposed to

pollution, or to natural environmental effects, is repor-

ted. Isozyme electrophoresis, cariotype description and

micronucleus test are used to describe the genetic

structure of organisms under study. Isozyme electrop-

horesis applied to Concholepas concholepas, Tagelus

dombeyii, Chilina dombeyana (Mollusca. Gastropoda),

and to Genypterus maculatus (Pisces. Ophidiformes),

indicate that Concholepas and Chilina are under envi-

ronmental stress, while Tagelus and Genypterus popu-

lations seem to be normal and in Hardy-Weinberg

equilibrium. Micronucleus test applied to four native

and two introduced fish species show clear correla-

tions between levels of river contamination and num-

ber of micronuclei. The cariotype description of two

native fish species reveals no gene-tic damage. The

need to establish a permanent genetic monitoring of

the aquatic biological resources of the Biobío Region

of Chile, is disscused.

KEYWORDS: Genetic resources. Biodiversity. Micronu-

cleus test. Isozymes. Pollution.

INTRODUCCION

Según la definición citada por FAO

(FAO/UNEP, 1981), un recurso genético es: "to-

da característica heredable de una especie vegetal

o animal que puede tener para la humanidad un

valor actual o potencial de uso". Esta característi-

ca puede ser: la resistencia a enfermedades, el

crecimiento rápido, la presencia O ausencia de

Gayana Zool. 59(1), 1995.

una sustancia química o cualquier otro factor de

rendimiento o calidad.

La mantención de los recursos genéticos y

de la biodiversidad constituyen en la actualidad

una preocupación creciente (Meffe, 1986). Esta

situación deriva, entre otras causas, del aumento

de la actividad antrópica, la que muchas veces

genera productos de desecho que pueden actuar

sobre los organismos poniendo en peligro a una

población o a una especie.

Gilpin y Soule (1986) estudian la variabili-

dad y adaptación de las poblaciones naturales no

sólo frente a la contaminación antrópica sino que

también frente a variaciones naturales del medio

ambiente. Definen esta situación como un peligro

que puede conducir a la extinción de las pobla-

ciones en forma determinística o estocástica. La

primera es muy rápida. La segunda es sutil y difí-

cil de observar y definir.

Cuando se analizan estas formas de extin-

ción en una población es necesario considerar en

ella tres aspectos: el fenotipo (morfología, fisio-

logía, distribución, etc.); la estructura etaria y la

adaptabilidad. Esta última incluye la medición de

la variabilidad como un parámetro importante pa-

ra cuantificar el tamaño genético efectivo de la

población.

Por otra parte la mutación inducida es un

riesgo potencial para la estabilidad de los recur-

sos genéticos de la población. Pueden ser induci-

das por factores derivados de la actividad

humana. Se ha demostrado que sustancias quími-

cas (metales pesados, pesticidas, herbicidas, etc.),

radiaciones, productos industriales (edulcorantes,

solventes, fungicidas), factores físicos, productos

de la industria farmacéutica, etc., son capaces de

alterar la estructura del DNA generando mutacio-

nes con resultados desconocidos para las especies

(Nelson y Roule, 1987).

Las mutaciones así generadas pueden ser

beneficiosas, subletales o letales, lo que puede

traducirse en alteración de la estructura genética

poblacional, disrupción del equilibrio de Hardy-

Weinberg y/o cambio en los procesos evolutivos.

Esto a su vez puede provocar cambios bruscos de

la diversidad e incluso extinción de las especies.

La Universidad de Concepción hizo un estudio

muy completo de la Cuenca Hidrográfica del Río

Biobío, logrando reunir gran parte de la informa-

ción fenotípica y ambiental que caracteriza el há-

bitat de las numerosas especies que habitan esta

cuenca (Faranda y Parra, 1993).

Este importante sistema hidrográfico ha sido

estudiado ampliamente desde el punto de vista de

su hidrología, sedimentología, morfología, biolo-

gía y de la calidad de sus aguas (Weinert, 1988).

Estudios que incluyeron además el área marina

adyacente (Díaz 1992). Tanto el río Biobío como

el área marina costera están sufriendo los efectos

de la acción antrópica, que se ca-racteriza por

contaminación y sobrexplotación de los recursos

naturales, lo que pone en peligro la biodiversidad

y sus recursos genéticos (Alay y col. 1992, Alay

1989).

El río Biobío se caracteriza porque desde su

origen en las lagunas Galletué e Icalma hasta el

Puente Callaqui (Fig. 2) tiene aguas de excelente

calidad. A partir de éste, la presencia de ciudades

e industrias determinan contaminación que se ha-

ce máxima en la Desembocadura (Tabla XI). Pa-

rra (1992) clasifica a las primeras como de

ca-lidad A, aptas para todo uso y a las últimas

como de calidad E, no aptas.

La abundante información reunida (Faranda

y col., 1993) caracteriza bastante bien la condi-

cion ambiental de la zona. Desgraciadamente,

muy poco o nada se sabe respecto a la estructura

genética de las diversas especies que la habitan y

menos aún de la interacción genotipo ambiente

que como se mencionó anteriormente puede pro-

vocar desaparición determinística o estocástica

de las poblaciones. Si a lo anterior agregamos la

mutación inducida por acción antrópica aparece

además un riesgo evolutivo.

Todo lo anterior determina la urgente nece-

sidad de realizar programas de vigilancia genéti-

ca que permitan detectar el grado de equilibrio o

desequilibrio en que la población se encuentra y

desarrollar las acciones necesarias para preservar

la variabilidad.

Aspecto importante en un Programa de esta

naturaleza es la elección de las especies a ser mo-

nitoreadas. El criterio puede ser múltiple, pero es

condición muy importante que ocupen niveles

superiores en la cadena trófica, lo que facilita la

observación del efecto de concentración de con-

taminantes y por otra parte que las especies elegi-

das tengan escasa movilidad, lo que las hace

especialmente adecuadas como marcadoras de

áreas restringidas que pudieran estar contamina-

das. Estos criterios primaron en la elección de las

especies seleccionadas para este estudio.

El presente trabajo tiene por objeto entregar

la información reunida hasta el momento, respec-

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, F. ef al.

to a la caracterización de los recursos genéticos

de las siguientes especies marinas de la Región

del Biobío: Concholepas concholepas, Tagelus

dombeyii, Genypterus maculatus. Como especies

dulceacuícolas Oncorhyncus mykiss, Salmo trut-

ta, Basilichthys australis, Percichthys trucha,

Percichthys melanops, Cauque mauleanum,

Cheirodon galusdae y Chilina dombeyana.

MATERIALES Y METODOS

Las diversas especies estudiadas fueron ana-

lizadas mediante los métodos electroforéticos y

cromosómicos. En general se comparó la situa-

ción de cada especie en condiciones normales y

en condiciones alteradas, ya sea latitudinal o lon-

gitudinalmente.

a) METODO ELECTROFORETICO:

Permite evidenciar aloenzimas. Mediante

conteo de los alelos es posible describir cuantita-

tivamente la estructura de la población.

Las muestras de las diversas especies estu-

diadas fueron sometidas a análisis electroforético

en geles de almidón para analizar la expresión de

sus diversos alelos (Harris y Hopkinson 1977).

Todos los individuos fueron adultos para asegu-

rar una expresión génica uniforme.

Correspondieron a las siguientes especies:

Genypterus maculatus, Concholepas conchole-

pas, Chilina dombeyana y Tagelus dombeyit. Los

lugares de muestreo se indican en la Fig. 1.

PREPARACION DE LAS MUESTRAS

Los ejemplares de moluscos, cuidadosamen-

te lavados, fueron extraídos de su concha. Se uti-

lizaron los siguientes tejidos músculo de pie y

hepatopáncreas de Concholepas concholepas;

músculo de pie de Tagelus dombeyii; músculo

rojo e hígado de Genypterus maculatus. Chilina

dombeyana fue macerada in toto.

Dependiendo del tamaño de la muestra se

agregó 300-400 ul de tampón de extracción (ver

Anexo) y mediante centrifugación por 8-10 min.

(centrífuga Eppendorf de mesón) se obtuvo un

sobrenadante limpio.

Cuando fue necesario las muestras se con-

servaron en Nitrógeno líquido.

PREPARACION DEL SOPORTE

Gel de almidón al 12 % p/v

En cada caso se utilizó soluciones tampón

adecuadas a cada especie (ver Anexo).

CONDICIONES DE ANALISIS.

Fuente de Poder Heathkit (Heath Company)

700 ml de Tampón electrodo.

Muestra absorbida en papel filtro Whatman

3 (6x5mm),

18-20 muestras por gel.

El voltaje utilizado no sobrepasó los 250

Volts. La corrida se suspendió según lo indicado

por el azul de bromofenol, usado como indica-

dor.

ANALISIS ESTADISTICO DE LOS DATOS

Todos los datos obtenidos en las diversas

especies fueron analizados mediante el programa

Biosys-1 (Swoford y Selander, 1989).

-Concholepas concholepas:

Se examinaron 150 muestras provenientes

de Mehuín (X Región), Quintay (V Región) y

Caleta Ramuntcho en la Bahía de San Vicente

(VIII Región) (Fig. 1). Los tamaños medios de

los ejemplares fluctuaron entre 7.18 y 9.53 cm

(Tabla D.

En esta especie se analizaron los siguientes

sistemas enzimáticos: Esterasa (ES), Fosfogluco-

mutasa (PGM), Leucino amino peptidasa (LAP),

Aspartato amino transferasa (AAT), 6 Fosfoglu-

conato deshidrogenasa (6PGDH), Glucosa 6 fos-

fato deshidrogenasa (G6PDH), Enzima málica

(ME), Octopino deshidrogenasa (ODH), Xantino

deshidrogenasa (XDH), Fosfatasa alcalina

(ALP), Isocitrato deshidrogenasa (IDH), alpha-

elicerol fosfato deshidrogenasa (alpha GPDH),

Malato deshidrogenasa (MDH), (Pasteur et al.

1988).

-Tagelus dombeyii

Se analizaron 87 individuos, provenientes

de Puerto Montt (40) y de la Bahía de San Vicen-

te (47) (Fig. 1), cuyos pesos y medidas aparecen

en la Tabla V.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Se analizaron los sistemas enzimáticos

mencionados anteriormente, excepto glucosa 6

fosfato deshidrogenasa (G6PDH) y enzima máli-

ca (MDH). Se agregó, sin embargo, la enzima

Glutamato oxalato transaminasa (GOT).

-Genypterus maculatus.

Se recolectaron 98 ejemplares adultos de

Genypterus maculatus mediante embarcaciones

artesanales frente a la Bahía Concepción (36" 40'

S, 73 02' W) (Fig. 1), durante un período de 17

meses (julio de 1989 a noviembre de 1990). Los

muestreos se hicieron durante la época de ocu-

rrencia de eventos de surgencia: 4 muestreos en-

tre los meses de octubre y noviembre de años

sucesivos, con un total de 56 ejemplares. En la

época de no surgencia 3 muestreos en los meses

de julio, agosto y abril con un total de 39 ejem-

plares. Sin embargo, para el análisis genético se

descartó el mes de julio, puesto que fue un mues-

treo con sólo tres individuos, lo que determinó

que en último término se analizaran 10 sistemas

isoenzimáticos en 95 individuos.

Los ejemplares de Genypterus maculatus

fueron pesados y medidos. Las tallas oscilaron

entre 42 y 95 cm; el peso entre 500 y 3000 g.

Se analizaron los mismos sistemas enzimáti-

cos que en Concholepas excepto Leucino amino

peptidasa (LAP), Aspartato amino transferasa

(AAT), Glucosa 6 fosfato deshidrogenasa

(G6PDH) y Octopino deshidrogenasa. Se agrega-

ron los siguientes nuevos sistemas: Sorbitol des-

hidrogenasa (SOD), Lactato deshidrogenasa

(LDH) y Fosfoglucosa isomerasa (PGI).

-Chilina dombeyana

Es un gastrópodo pulmonado de agua dulce

(Valdovinos, 1987 y Stuardo 1961), en el que se

estudiaron 85 ejemplares adultos provenientes

del río Biobío. De éstos, 42 fueron extraídos

desde el sector del Puente Callaqui cercano a la

ciudad de Santa Bárbara, con aguas que tienen

calidad A. Los cuarenta y tres restantes provinie-

ron de la desembocadura. Esta área del río tiene

aguas de calidad E (Parra 1993), las que además

son salobres por su mezcla con el mar debido al

ciclo regular de mareas (Fig. 2).

En esta especie se examinaron los sistemas

enzimáticos mencionados para Concholepas ex-

cepto: Aspartato amino transferasa (AAT), 6 fos-

foglucosa deshidrogenasa (6PGDH), Glucosa 6

fosfato deshidrogenasa (G6PDH), Enzima málica

(EM), xantino deshidrogenasa (XDH) y Malato

deshidrogenasa (MDH). A esto es necesario

agregar los siguientes: Fosfoglucosa isomerasa

(PGI), Glutámico oxalacético transaminasa

(GOT), Adenilato quinasa (AK), Tetrazolio oxi-

dasa (TO).

b) METODO CROMOSOMICO:

Lo dividimos en dos aspectos:

b.1. Test de Micronúcleo

Permite evidenciar rupturas cromosómicas

que se ven como fragmentos acéntricos en el ci-

toplasma. Existe una relación directa entre el nú-

mero de fragmentos y la intensidad del agente

inductor (compuestos químicos o agentes físi-

cos). La observación se realizó en las siguientes

especies en las que el número de individuos cap-

turados mediante redes monofilamentos se indica

entre paréntesis: Onchorhyncus mykiss (19), Sal-

mo trutta (12), Basilichthys australis (33), Per-

cichthys trucha (24), Percichthys melanops (15)

y Cauque mauleanum (5). Todos los individuos

examinados eran adultos. El diagnóstico de estas

especies se hizo de acuerdo a lo indicado por

Arratia et al. (1981) y por Campos (1985).

Los frotis se hicieron en terreno de acuerdo

a lo indicado por Schmid (1975) y Hooftman y

Raat (1982).

La sangre se extrajo por punción cardíaca

mediante micropipeta impregnada en citrato de

sodio (2.5 %). Los frotis se secaron al aire y se

fijaron en metanol absoluto. En el Laboratorio se

tiñen con Giemsa al 4 % en tampón fosfato pH

6.7; se lavan con agua destilada y se dejan secar

al aire.

El conteo de los micronúcleos se hace según

lo indicado por Racine y Matter (1984). Se cuen-

tan 2000 células por portaobjeto, examinando

dos por cada ejemplar con un total de 270.563

eritrocitos contados en 108 especímenes. La ob-

servación se hizo en un microscopio C. Zeiss

Standard R.A. con 1000x de aumento. Los por-

taobjetos fueron numerados y los conteos se hi-

cieron "a ciegas".

b.2. Descripción del cariotipo.

Para la descripción del cariotipo de Per-

cichthys trucha y Cheirodon galusdae se utilizó

la técnica de Chourrout y Happe (1986). Los pe-

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, FE. et al.

ces fueron anestesiados en alcohol isoamílico al

0.5 % e inyectados con una solución de colchici-

na (0.7 % en NaCl 0.8 %) 1.m. en una dosis de 6

ml/Kg de peso, con un tiempo de tratamiento de

5 horas. Fueron sacrificados por dislocación cer-

vical. Las muestras de riñón fueron sometidas a

un schock hipotónico en solución de citrato trisó-

dico 0.9 %, durante 20 minutos y fijadas en Car-

noy, con dos cambios de fijador de 30 minutos

cada uno.

Previamente a la tinción se disocia con tijera

un trozo de tejido en un portaobjeto excavado; se

agregan 2-3 gotas de ácido acético 50 % y con

una pipeta Pasteur se gotea la suspensión en por-

taobjetos limpios, los que son teñidos en una so-

lución filtrada de Giemsa 10 % pH 6.7 (Tampón

fosfato) por 30 minutos y secadas al arre.

RESULTADOS

a) MÉTODO ELECTROFORÉTICO

-Concholepas concholepas

En la Tabla I se señala el número de indivi-

duos y sus tamaños.

Las enzimas LAP, ES y PGM resultaron po-

limórficas con 2, 3 y 2 alelos respectivamente

(Tabla ID). La frecuencia génica de las enzimas

polimórficas en las tres localidades muestreadas

se indica en la Tabla HI.

Finalmente, en la Tabla IV se indica la hete-

rocigosidad promedio.

-Tagelus dombeyii

En la Tabla V se señala los tamaños prome-

dios de los individuos adultos provenientes de

San Vicente y Puerto Montt.

De los 12 sistemas enzimáticos analizados,

resultaron polimórficos PGM, con 4 alelos, IDH

con dos alelos LAP y GOT con 3 alelos cada

uno. La Tabla VI muestra las frecuencias alélicas

y la heterocigosidad de ambas poblaciones; no

hay diferencias significativas entre ellas. Esto se

ve corroborado en la Tabla VII, mediante un aná-

lisis de contingencia.

-Genypterus maculatus

De los 10 sistemas enzimáticos analizados

(Tabla VIII) resultaron polimórficos EST-2,

EST-3, PGI-2, ME-1, PGM-1, alpha GPDH-1 y

SDH-1 para el criterio de P< 0.95. LDH-1 resultó

ser polimórfico para el criterio P< 0.99,

Las frecuencias alélicas analizadas en los

períodos de surgencia y no surgencia (Tabla IX)

no revelan diferencias notables entra ambos pe-

ríodos. La heterocigosidad media observada y es-

perada confirma la observación anterior (Tabla

Xx).

-Chilina dombeyana

Los datos obtenidos para los 85 individuos

analizados (42 y 43 respectivamente para cada

una de las estaciones de muestreo estudiadas)

evidencian variabilidad para 3 de los 17 loci estu-

diados: GOT-1, EST-3 y LAP-2; este último es el

único claramente interpretable ya que GOT-1 re-

veló ocasionalmente la existencia de heterocigo-

tos claramente diferenciables; la mayoría de las

veces éstos aparecían como formados por una

banda más gruesa y difusa. EST-3 a semejanza

de GOT-1 también ocasionalmente reveló la pre-

sencia de 3 heterocigotos para 3 alelos. La mayo-

ría de las veces aparecieron como una banda

difusa y más gruesa que los homocigotos.

Debido a la poca seguridad en la interpreta-

ción de estos zimograma y al resultado negativo

obtenido al ensayar diversas variaciones en el

método electroforético, se decidió no incluirlos

en el análisis genético.

Al analizar mediante una tabla de contin-

gencia, el comportamiento de los alelos de LAP-

2 en las dos localidades (Tabla XI!) se revela

fijación del alelo A en la desembocadura. En esta

misma Tabla se indican las frecuencias de los di-

versos alelos de LAP-2 en ambas localidades

(Tabla XII). Respecto a las frecuencias alélicas

de GOT-1 y EST-3 no es posible determinarlas

por las razones que arriba se señalan.

b) MÉTODO CROMOSOMICO

b.1. Test de Micronúcleo

Los resultados del análisis de metales pesa-

dos en sedimentos del sector medio del río (Naci-

miento) y en diversos tejidos de peces nativos e

introducidos se ilustran en las Tablas XIV y XV

respectivamente. Ambas revelan la presencia en

concentraciones variables de me-tales pesados, lo

que confirma la clasificación de diversas calida-

des de agua hecha por Parra (1992). La inciden-

cia de eritrocitos micronucleados está

correlacionada directamente con estos hallazgos

en las zonas altas, media y baja del río, lo que se

observa en la Tabla XIII.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

b.2. Cariotipo

El número cromosómico diploide modal

2n= 50, para Cheirodon galusdae y 2n= 44 para

Percichthys trucha así como peso, longitud y se-

xo de los 12 ejemplares analizados se indican en

las Tablas XVI y XVII. Las morfologías cromo-

sómicas se pueden ver en las Figuras 4 y 5 res-

pectivamente.

DISCUSION Y CONCLUSIONES

a) MÉTODO ELECTROFORÉTICO

Concholepas concholepas

De los resultados mencionados anteriormen-

te podemos deducir que las localidades de Quin-

tay y Mehuín, situadas a 500 Km al Norte y 500

Km al Sur de Ramuntcho, respectivamente, tie-

nen seguramente la misma estructura genética

dada la semejanza de frecuencias génicas para

los tres sistemas polimórficos estudiados (Tabla

II), lo que estaría indicando flujo génico entre

ambas poblaciones (Lucotte, 1983).

La bahía de Ramuntcho ubicada entre las 2

bahías anteriores, si bien es semejante, presenta

ligeras diferencias para 2 de los 3 sistemas enzi-

máticos muestreados. ES y PGM tienen frecuen-

cias distintas a las que se observan en Quintay y

Mehuín (Tabla III). Esta situación es aparente-

mente contradictoria con la dispersión natural de

la especie, en que sus larvas Veliger deberían ser

transportadas de Sur a Norte por la corriente de

Humboldt, colonizando de manera uniforme las 3

bahías.

Sin embargo, desde el punto de vista de la

heterocigosidad observada (Ho) y esperada (He)

no existen diferencias. La Tabla IV señala a Ra-

muntcho como no significativamente distinta de

las otras.

Tampoco el tercer sistema enzimático estu-

diado (LAP) presenta diferencias en las 3 pobla-

ciones, lo que parece confirmar que Ramuntcho

forma un continuo con las 2 poblaciones ante-

riores.

Es importante, sin embargo, hacerse la pre-

gunta de cuál podría ser la causa de las diferen-

cias en las frecuencias génicas que Ramuntcho

tiene para los sistemas ES y PGM.

El aislamiento reproductivo, es decir, la

existencia de algún tipo de barrera geográfica

que impidiera la entrada y salida de larvas Veli-

ger de la Bahía de San Vicente, en la que se ubi-

ca Ramuntcho, no explica esta situación por las

siguientes razones:

La información existente sobre hidrología,

tiempo de residencia de las aguas, surgencias,

etc. (Ahumada 1989, Brito 1992) aseguraría la

circulación y la entrada a la Bahía de larvas Veli-

ger provenientes de otros lugares.

También se descarta la hipótesis de aisla-

miento geográfico y reproductivo, por la seme-

janza existente entre Quintay, Ramuntcho y

Mehuín para los alelos del sistema LAP. Este úl-

timo hecho está indicando la existencia de flujo

génico entre las tres localidades, lo que es coinci-

dente con lo informado por Carrasco y Gallardo

(1992).

La diferencia observada la atribuimos a un

fenómeno selectivo que «podría estar afectando

los sistemas enzimáticos ES y PGM. Este fenó-

meno puede ser consecuencia de la intensa pesca

a que es sometido el recurso, lo que puede gene-

rar un fenómeno de deriva genética, o a la conta-

minación que tiene la Bahía de San Vicente.

Antecedentes aportados por Brito (1992), y Díaz

(1992) indican que: "la Bahía de San Vicente

muestra un alto grado de contaminación debido a

desechos descargados en su interior por la indus-

tria petroquímica con efluentes líquidos de 12

mil m'/día que aportan 1095 Kg de mercurio al

año, cloro activo entre 0.1 y 3 ppm, cloruros en-

tre 100 y 2000 ppm; también son vertidos en for-

ma aislada o conjunta: ácido clorhídrico,

hipoclorito de sodio y soda caústica.

Por otra parte está el aporte de la planta de

polietileno con efluentes líquidos de 26 mil

m'/día, los que contienen cloruros en concentra-

ciones entre 50 y 2000 ppm, aceites lubricantes

(1.5 ton métricas/mes), ácido clorhídrico e hidro-

carburos clorados.

Por su parte la industria siderúrgica, próxi-

ma a la Bahía de Ramuntcho, vierte efluentes lí-

quidos en cantidades de 112 mil m'/día con

contenidos de hierro, compuestos amoniacales,

fenoles y ácido clorhídrico. A lo anterior se su-

man 3 mil m'/día de aguas servidas, 1500 m*/día

de agua de cola y 50 m'/día de sangre provenien-

tes de diversas plantas pesqueras".

Queda, sin embargo, por establecer la con-

centración que estos diversos compuestos tienen

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, F. et al.

en el agua, sedimentos y en los tejidos de los or-

ganismos de esta especie que viven en la Bahía

de San Vicente. Una mejor aproximación al pro-

blema se tendrá cuando se analicen los resultados

de muestrear otros sectores y edades, así como

análisis químico de los tejidos, en las poblaciones

de Concholepas de la costa de la Octava Región.

Esta información permitirá tener mayor seguri-

dad respecto al posible efecto que pudieran tener

sobre la estructura genética de esta especie.

En todo caso situaciones como las que des-

cribimos para Concholepas son semejantes a los

numerosos casos que Battaglia y Bisol (1988),

Nevo y col. (1983), Rasmuson (1981) describen

para diversos tipos de organismos marinos que

habitan zonas de intensa actividad humana.

Tagelus dombeyii

De los sistemas analizados solamente fueron

polimórficos: PGM, IDH, LAP y GOT. Todos

los sistemas presentaron un locus excepto IDH

que presentó dos. La Tabla VI muestra las fre-

cuencias génicas y la heterocigosidad de cada po-

blación. En la Tabla VII aparecen los resultados

de comparar las poblaciones de Pto. Montt y San

Vicente para todos los loci: P=0.48, indica la

existencia de grupos estadísticamente no dife-

rentes, lo que está indicando que ambas poblacio-

nes se encuentran en equilibrio de Hardy

Weinberg lo que a su vez parece indicar flujo gé-

nico entre ambas.

En líneas generales podemos deducir que

esta especie, a semejanza de Concholepas, tam-

bién tiene un amplio rango de dispersión me-

diante su fase larval natatoria, que se explica por

la frecuencia génica semejante en las 2 poblacio-

nes. Al parecer y a diferencia de Concholepas,

tampoco ha sido extraída masivamente ni sufrido

los efectos de la contaminación de la Bahía de

San Vicente (Meffe, 1986) dado que se encuen-

tran en equilibrio de Hardy Weinberg.

Genypterus maculatus

El polimorfismo calculado para los 18 loci

es de 0.44 (Alay y col 1993), lo que coincide par-

cialmente con los entregados por Oyarzún y col.

(MOD):

Brulé (1989) obtiene valores semejantes pa-

ra Pleuronectes platessa, pez bentodemersal fre-

cuente en la costa Noreste de Bretaña.

Empleando 13 sistemas enzimáticos con 21 loci,

encuentra un polimorfismo de 0.47.

La heterocigosidad promedio fluctúa débil-

mente a lo largo del año excepto en el mes de no-

viembre donde se observa un descenso de

he-terocigotos (Tablas IX y X), fluctuaciones que

parecieran estar asociadas a los fenómenos de

surgencia y no surgencia costeras. Sin embargo

el análisis de los grupos muestreados mensual-

mente revela flujo génico abierto, con un valor

de Fst de 0.068. La distancia génica es menor de

0.09 y la identidad génica oscila entre 0.91 y 0.99

entre los distintos grupos mensuales analizados,

lo que corrobora la existencia de un solo grupo

poblacional (Alay et al., 1993).

Finalmente podemos decir que la población

de Genypterus maculatus capturados (Tabla X)

frente a la Bahía de Concepción, se encuentra en

equilibrio de Hardy Weinberg, lo que parece ase-

gurar la estabilidad del recurso.

Chilina dombeyana

Los datos obtenidos indican polimorfismo

en los sistemas enzimáticos GOT-1, EST-3 y

LAP-2. Estos resultados revelan una neta dife-

renciación entre las 2 poblaciones (Tabla XII).

En la Desembocadura prevalece al alelo LAP A

(con una frecuencia alélica de 0.95), en cambio la

población del Puente Callaqui presenta 6 alelos,

siendo el más frecuente el alelo LAP D (con una

frecuencia alélica de 0.65). Estos datos influyen

sobre el nivel de polimorfismo, sobre el índice de

semejanza genética y de distancia genética (Ta-

bla XID.

Debido a que no podemos excluir que esta

distribución alélica esté influenciada por el fenó-

meno de deriva genética dependiente de la frag-

mentación y aislamiento en una población de

organismos con escasa movilidad, el elevado nú-

mero de alelos y de heterocigotos observados en

la muestra de Callaqui reduce el rol del herma-

froditismo en la pérdida de variabilidad genética

y Sugiere una interpretación adaptativa, que po-

dría ser atribuida entre otras causas a un fenóme-

no de adaptación a la calidad E de las aguas y/o a

la diversa concentración salina que es dable espe-

rar entre estas 2 zonas.

Esta última hipótesis es coincidente con los

datos de la literatura que atribuyen a la enzima

LAP una función reguladora de la concentración

aminoacídica. (Nevo et al., 1983). Escindiendo

los enlaces peptídicos libera aminoácidos y con-

diciona el proceso de osmorregulación al variar

las condiciones de salinidad del medio (Koehn et

¡99

Gayana Zool. 59(1), 1995.

al., 1980 y Battaglia y Bisol, 1988). Para com-

pletar este estudio y descartar con seguridad la

hipótesis de aislamiento reproductivo es necesa-

rio muestrear el área de Nacimiento, localidad in-

termedia entre Callaqui y la Desembocadura. La

presencia o ausencia de un "cline" de frecuencias

alélicas aceptaría o recha-zaría la hipótesis.

Es importante destacar que Chilina dombe-

yana ofrece un interesante caso de estudio a se-

guir en el tiempo, ya que la población de la

Desembocadura pareciera ser una raza geográfi-

ca, primera etapa en la diferenciación específica,

hecho que necesita ser confirmado.

B) MÉTODOS CROMOSOMICOS

b.1. Test de micronúcleos

De acuerdo a los resultados obtenidos, todas

las especies analizadas muestran una tendencia al

aumento en la frecuencia de eritrocitos con MN a

medida que se desciende de las zonas de aguas

no contaminadas de clase A, ubicadas en la parte

alta del río, a las zonas contaminadas con aguas

de clase E, situadas en la parte baja del mismo

(Tabla XII y Fig. 4).

Del análisis de la información de la Tabla

XIII y de la Fig. 3 podemos deducir lo siguiente:

Las dos especies introducidas en el río Bio-

bío, S. trutta y O. mykiss, presentan diferencias.

La primera aparece como más sensible ya que los

niveles de MN encontrados en los muestreos de

la parte media del río son del orden de 1.25 “/00,

en cambio para O. mykiss son de 0.32 “/00.

Entre las especies nativas, P. trucha resulta

más sensible que B. australis. Sus valores para

los 2 sectores inferiores del río son 2.42 “/00, y

5.88 /00. En cambio B. australis presenta 1.58

%/00 y 5.48 “/00, respectivamente.

Por otra parte, si observamos en conjunto el

comportamiento de las diversas especies en la re-

gión media del río, P. melanops aparece como la

más sensible con una media de 2.76 oo de MN,

si la comparamos con O. mykiss (0.32 */00), S.

trutta (1.25 */00), B. australis (1.58 */00) P. tru-

cha (2.42 */00) y C. mauleanum (1.29 %/00).

De lo anterior se puede concluir que P. tru-

cha y B. australis, en este orden, son las especies

más adecuadas para estudiar la relación contami-

nación-cambio genético; si bien no son tan sensi-

bles como P. melanops, tienen un grado de

sensibilidad mayor que las 2 especies introduci-

das y que C. mauleanum.

Por otra parte su distribución en las regiones

alta, media y baja del río las convierte en mejores

especies indicadores que P. melanops, que si

bien es muy sensible sólo se encuentra en abun-

dancia en la parte media del río. Tal vez esta últi-

ma, por su mayor sensibilidad, sería adecuada

para su empleo en ensayos experimentales.

En general los peces se utilizan como bue-

nos indicadores de la calidad del agua. El aumen-

to de la frecuencia respiratoria, los porcentajes de

mortalidad inducidos, las lesiones patológicas

que presentan, etc., revelan el grado en que el

agua puede estar contaminada (Billard 1991).

También hay abundante información de su uso

como indicadores de genotoxicidad (Billard

1991, Guyomard 1989, Billard y Marcel 1986).

En relación a genotoxicidad, se puede decir

que para que se generen MN en los peces que se

encuentran en las condiciones naturales del río

Biobío, son necesarios dos factores: por una parte

un agente clastogénico y por la otra un tratamien-

to crónico. Ambas condiciones se dan en las pro-

ximidades de la Desembocadura del río (Parra

1095)

Se ha detectado la presencia de agentes clas-

togénicos como Hg, Cd, fenoles, etc. (Parra

1992), los que aisladamente o en conjunto pue-

den inducir fracturas cromosómicas (Tabla X]..

Respecto al tratamiento crónico pareciera

que la movilidad de los peces fuera atentatoria

contra esta forma de tratamiento. Sin embargo, si

estos desplazamientos se producen, los peces de-

ben volver pasado un tiempo a los mismos luga-

res originales, ya sea por necesidades tróficas,

etológicas, reproductivas y/o estacionales. Por

otra parte, de los muestreos realizados se deduce

que hay especies que se encuentran preferente-

mente en un sector y no en otro.

Todo esto parece indicar que en algunos

sectores del río Biobío los peces están siendo so-

metidos a un tratamiento clastogénico crónico.

Los análisis de metales pesados, fenoles y pestl-

cidas realizados en sedimento (Tabla XIV) y en

muestras de hígado y grasa de estas especies (Ta-

bla XV) así lo indican.

Finalmente, el aumento en la incidencia de

eritrocitos con MN en los peces examinados pa-

rece estar relacionado con los mayores niveles de

contaminación del río.

b.2. Descripción del cariotipo

En el presente trabajo se incluye el cariotipo

de 2 peces: Cheirodon galusdae y Percichthys

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, F. ef al.

trucha. En general nuestro país y la Región del

Biobío contrastan con el resto de la ictiofauna

Americana por su bajo número de especies (36) y

por un marcado endemismo y primitividad (Cam-

pos 1985). Por otra parte la ictiofauna es poco

conocida y desde el punto de vista de la estructu-

ra cariotípica sólo se han estudiado las de Basi-

lichthys y Galáxidos (Campos 1972 y 1985).

El número diploide obtenido para Ch. galus-

dae es el predominante para la Familia Characide

con un número constante de 2n= 50-52 (Fig. 4 y

Tabla XVI). En los Perciformes el número predo-

minante es 2n= 48 con todos sus cromosomas

acrocéntricos(Kirpichnikov, 1981)

El cariotipo 2n= 48, NF= 96 es actualmente

visto como cariotipo ancestral para más del 90 %

de los teleosteos (Kirpichnikov, 1981). Sobre es-

ta base, el cariotipo de Ch. galusdae ha debido

incluir por lo menos inversiones pericéntricas y

fusiones robertsonianias.

El cariotipo de P. trucha es primitivo y for-

mado solamente por elementos acro-telocéntricos

siendo su fórmula 2n = 44 (Fig. 5 y Tabla XVID.

En todos los ejemplares analizados de am-

bas especies, se evidenciaron anormalidades cro-

mosómicas visibles al microscopio óptico. Es

importante continuar con muestreos cariotípicos

periódicos, que permitan detectar cambios y/o

anormalidades aneuploides, poliploides, clasto-

génicas, indicadoras del estado genético de la es-

pecie.

A semejanza de lo establecido por otros au-

tores (Bruce, 1984, Thorpe ef al. 1981, Wolh-

farth 1986, Battaglia y Bisol 1988, Nevo et al.,

1983) los resultados obtenidos en este estudio es-

tan indicando la existencia de una clara relación

entre la estructura genética de las poblaciones es-

tudiadas y el cambio del ambiente producido por

acción antrópica o por fluctuaciones naturales del

mismo.

Los resultados obtenidos en el río Biobío

para los peces examinados mediante el test de

micronúcleo revelan correlación entre clastogeni-

cidad y contaminación antrópica, situación que

pareciera confirmarse con la presencia de conta-

minantes en los tejidos de peces sometidos a aná-

lisis químicos (Tabla XV).

Una situación semejante se observa para una

de las poblaciones de Chilina dombeyana que es-

taría respondiendo a una adaptación a condicio-

nes de salinidades distintas en la Desembocadura

del río, situación que se hace evidente por la fija-

ción de uno de los alelos del sistema LAP.

En cuanto al área costera marina adyacente,

los resultados obtenidos para Genypterus macu-

latus en la bahía de Concepción indican que esta

población se encuentra en equilibrio de Hardy

Weinberg. Por lo tanto los niveles de pesca que

efectúan principalmente pescadores artesanales

parecieran no haber alterado la estructura genéti-

ca del recurso (Ryman y Otter 1981). Esto se

hace extensivo a las poblaciones de 7. dombeyíi

en las Bahías de San Vicente y Puerto Montt.

No ocurre lo mismo para la población de

Concholepas concholepas en la Bahía de San Vi-

cente. Se ha detectado una situación de ausencia

de equilibrio de H. Weinberg para 2 de los 18

sistemas isoenzimáticos estudiados; lo cual es

atribuible al nivel de acción antrópica que se

ejerce sobre la Bahía. Esta alternativa es necesa-

rio confirmarla.

La estructura genética poblacional de 7.

dombeyil, aparentemente no está afectada por es-

tos factores.

Finalmente es posible concluir que:

1. Es necesario desarrollar una política que

permita obtener recursos que hagan factible el

monitoreo periódico de la cuenca y de sus recur-

sos genéticos, para preservar en la mejor forma

posible su estado natural. Hacer extensivo este

monitoreo a áreas suficientemente amplias a ob-

jeto de impedir la reducción en el número de sub-

poblaciones o las extinciones locales o los estrés

severos.

Es necesario tener en cuenta que no sólo la

alteración del ambiente o la presión de extracción

alteran los ecosistemas sino que también la cons-

trucción de sistemas que impiden el libre curso

de los ríos como represas hidroeléctricas que a

menudo interfieren directamente con la vida ani-

mal. Así ocurre por ejemplo con los peces y sus

migraciones de desove. A veces en algunos

stocks las condiciones de tolerancia a determina-

das características del agua son muy estrechas y

las alteraciones en el pH, T”, flujo, salinidad, tur-

bidez, etc., que provoca por ejemplo una represa,

son determinantes para la extinción de especies

de peces (Bruce 1984).

2. Es necesario identificar los recursos gené-

ticos. Es decir, reunir datos sobre la diversidad de

las poblaciones existentes en la Región en sus di-

versos sectores, con el objeto de establecer el

erado de diferenciación entre las mismas (Stocks

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Symposium 1981). Estos datos deben incluir no

sólo los caracteres genéticos, sino que también la

información relacionada con datos morfológicos,

fisiológicos y cromosómicos.

La identificación de los recursos genéticos

permitirá conocer la variabilidad genética, lo que

a su vez hace posible desarrollar esfuerzos para

conservar las formas genéticas más divergentes y

variables, ya que ellas proveerán el material ge-

nético necesario para un mejor manejo de nues-

tros recursos.

3. Finalmente es necesario educar y mante-

ner intercambio de información no sólo con la

comunidad para que tome conciencia de la nece-

sidad de defender el ecosistema, sino que con los

responsables del manejo y mantención de las es-

pecies naturales de la zona.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo ha sido realizado con fondos

provenientes del Proyecto FONDECYT 0200-92,

del Proyecto 203122 de la Dirección de Investi-

gación de la Universidad de Concepción y del

Proyecto 13.2 del Centro EULA-Chile. A estas

organizaciones agradecemos su importante ayu-

da. También agradecemos a la Sra. Ruth Chávez

por su permanente ayuda dactilográfica. Final-

mente se agradecen las sugerencias de los reviso-

res anónimos.

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Gayana Zool. 59(1), 1995.

TaBLa N* IL. Media del tamaño y peso de los ejemplares analizados de Concholepas concholepas de las diferentes

localidades.

Localidad N* Individuos Talla Peso Total

Quintay 51 OS Xx: 11340)

s: 0.61 S: 31.4

Ramuntcho 51 Xx: 9.53 Xx: 213.3

s: 0.93 S: DU 2L

Mehuín 51 Xx: 7.18 Xx: 96.22

s: 1.09 S: 62.90

153 X: 8.22 Xx: 141.50

S: 62.87

TABLA N? II. Sistemas enzimáticos muestreados en Concholepas concholepas.

Enzimas Código E.C. Estructura Tejido NEocuiMS RENAL OCRE N? Alelos

PGM El Monomérica Músculo l 1 2

MDH ELL Dimérica Branquia 3 - -

GPGDH 1.1.1.44 Dimérica Músculo 1 - -

ES Sel Monomérica Branquia 4 1 3

ICDH 1.1.1.42 Dimérica Branquia 2 - -

LAP 3.4.11.1 Monomérica Músculo - 1 2,

(+) M= loci monomórficos

P=loci polimórficos

TABLA N? III. Frecuencia de alelos polimórficos en las poblaciones muestreadas (Concholepas concholepas).

LOCALIDAD

Enzimas Quintay Ramuntcho Mehuín

ALELOS ALELOS ALELOS

A B E A B C A B C

PGM 0.617 0.382 --- 0572 0.627 --- 0.63 0.37 ---

LAP 0.637 0.362 --- 0.72 0.28 --- 0.64 0.36 ---

ES 0.24 0.64 0.106 0.30 0.64 0.06 OSA O STA ODO

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, FE. ef al.

TABLA N* IV. Heterocigosidad Promedio Concholepas concholepas

NUMERO DE INDIVIDUOS

Localidad Locus

Heterocigotos Total Heterocigosidad

LAP 20 51 20/51:0.39

Quintay PGM 30 Sl 30/51:0.58

ES 26 51 26/51:0.55

H:0.108

LAP 17 el 17/51:0.33

Ramuntcho PGM 38 51 38/51:0.74

ES Sl 48 31/40:0.64

H:0.114

LAP 19 Sl [9/S1E£03S

Mehuín PGM 20 51 20/51:0.39

ES 32 43 32/43:0.74

H:0.105

TaBLa N* V. Distribución de Tamaños y pesos de 2 poblaciones de Tagelus dombeyil.

Población Long. prom. ES, Peso prom. E dis:

Pto. Montt is 125 ¡051 5.34

San Vicente 8.85 0.78 41.29 9.93

Gayana Zool. 59(1), 1995.

TABLA N* VI. Frecuencias alélicas y heterocigosidad (H) de las poblaciones de Puerto Montt (PM) y San Vicente

(S.V.) Tagelus dombeyti

Alelo

UVOQu>

an]

0.150

0.400

0.383

0.633

PGM

0.171

0.243

0.486

0.100

0.771

Locus y tamaño de la muestra

IDH-1

0.656

0.344

0.250

0.603

0.397

0.241

0.468

0.355

OUT

0.355

LAP-2

53)

0.443

0.371

0.186

0.429

GOT-1

0.463

0.278

0.289

0.556

0.452

0.161

0.387

0.452

TABLA N* VII. Análisis de contingencia (X?) para todos los loci en las 2 poblaciones de T. dombeyii (San Vicente y

Puerto Montt).

Locus

PGM-1

IDH-1

LAP-2

GOT-1

(Totales)

No. of

alleles

UU Un

Chi-square

3.818

.364

.082

3.265

ISSO

DAB:

NN RR

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, FE. et al.

TABLA N? VIII. Sistemas enzimáticos muestreados en Genypterus maculatus

ENZIMA

Esterasas

Enzima

Málica

E.C.1.1.140

Fosfoglucosa

Isomerasa

ECRS1O

Fosfogluco-

Mutasa

ECTS

Fosfogluco-

nato-S

Deshidrogenasa

ECilal41:49

Glicerol-3-

Fosfato Des-

hidrogenasa

IEC ollo

Isocitrato

Deshidrogenasa

NADP

ECA AZ

Sorbitol

Deshidrogenasa

ECALTra:

Malato

Deshidroge-

nasa

¡5 Calc SES

Lactato

Deshidroge-

nasa

EXC E 27

N* LOCI

Est-1

Est-2

Est-3

Est-4

Pedh-1

Gpdh-1

Idh-1

Idh-2

Sdh-1

Sdh-2

Mdh-1

Mdh-2

Ldh-1

N* ALELOS

== 0N

(59)

N* SUBUNID.

Monómero

Tetrámero

Dímero

Monómero

Dímero

Tetrámero

Dímero

Tetrámero

TEJIDO

Hígado

Músculo

Blanco

Hígado

Músculo

Blanco

Hígado

Músculo

Blanco

y Rojo

Músculo

Blanco

y Rojo

Gayana Zool. 59(1), 1995.

TABLA N* IX. Frecuencias alélicas de 4 loci polimórficos en los distintos muestreos realizados a lo largo del período

de estudio Genypterus maculatus.

Locus Alelos No Surgencia Surgencia

Ago89 Abr90 Oct 89 Nov 89 Ene 90 Nov 90

Em-1 a 0.583 0.630 0.800 0.682 0.214 OLD,

b 0.417 0.370 0.200 0.318 0.786 0.478

Pgm-1 a 0.708 0.500 0.467 0.682 0,429 0.587

b 0.292 0.500 00598 0.318 0.571 0.413

Gpdh-1 a 0.667 0.500 0.719 0.550 0.643 0.609

b 0.333 0.500 0.281 0.450 0.357 0.391

Ldh-1 a OS] 0.963 1.000 1.000 1.000 1.000

b 0.083 0.037 0.000 0.000 0.000 0.000

TABLA N* X. Heterocigosidad media observada y esperada de acuerdo a Hardy-Weinberg en los distintos mues-

treos. Genypterus maculatus

EPOCA HETEROCIGOSIDAD

PROMEDIO

CONTEO DIRECTO HARDY-WEINBERG

NO SURGENCIA Ago 89 0.109 0.120

Eso + 0.058 + 0.056

Abr 90 0.137 0.121

ENS + 0.073 + 0.060

SURGENCIA Oct 89 0.092 0.096

GÍSt + 0.051 DO0S2

Nov 89 OD 0.110

e.s. + 0.065 + 0.058

Ene 90 0.088 0.107

CIS + 0.043 == 01097

Nov 90 0.043 0.061

e.S + 0.026 + 0.061

PROMEDIO 0.099 0.103

(+4) e.s. + 0.033 + 0.022

(5e.s.: error estándar.

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, F. et al.

TABLA N* XI. Presencia de contaminantes químicos en muestras de agua en la sección media del río Biobío

(Nacimiento 1991). Datos Centro EULA Chile.

Zona A. Antes de la descarga de desechos Industriales

Zona B. Después de la descarga de desechos Industriales

Contaminantes (ppb)

ZONA

Cd Cu Hg Pb Pentaclorofenol

A Maximum 0.4 1.93 0.35 203 1.52

Minimum 0.25 1.23 0.01 0.17 0.009

B Maximum Sa 116) BIOS 0.40 4.39 5.38

Minimum <0.02 0.14 0.01 1.50 0.02

TABLA N* XII. Análisis de contingencia (X”) para 2 poblaciones (Desembocadura y Santa Bárbara) de Chilina

dombeyana. Locus LAP2.

Alelo

Población A B € D E F

BOCA Obs (O) 80.000 .000 2.000 2.000 .000 .000

ESp (E) 41.012 1.482 6.918 31.624 494 2.471

(O-E)**2/E 37.065 1.482 3.496 27.750 494 2.471

STA.BARBARA —Obs(O) 3.000 3.000 12.000 62.000 1.000 5.000

ESp (E) 41.988 1.518 OSA ZSTÓ UTA,

(O-E)**2/E 36.203 1.448 SIMI MOS 483 2.413

Chi-cuadrado= 143.823

(GE, =3

P = .00000

Tabla N* XIII. Incidencia de eritrocitos con micronucleo (9/00) y número de peces capturados en las tres zonas

propuestas para el río Biobío.

Frecuencia Media de Eritrocitos Micronucleados (%/00)

(número de peces)

ZONA

O. mykiss S.trutta fario B.australis P.trucha P.melanops C.mauleanum

ALTA 0.25+0.35 0.44+0.78 0.33+0.34 0.80 - -

(24) (18) (7) (3)

MEDIO S2 20310 OS 2075 ASS T35Ss 242+2:713%. 2.1652.86 1.29 + 1.68

(10) (4) (21) ( (13) (S)

BAJA - - 5.48 +3.79* 5.88 +2.95*

Zona Alta: Lagos Galletué, Icalma y Laja, Sectores de Callaqui; Zona Media:Nacimiento: Zona Baja: Santa Juana.

Existe diferencia significativa, Test t-Student: *P 8.85, *P 8.81

Gayana Zool. 59(1), 1995.

TABLA N* XIV

Metales Pesados analizados en sedimentos (peso seco).

Lugar : Río Biobío. Estación Nacimiento

Fecha : (N) Noviembre 1989

(A) Abril 1990

(AG) Agosto 1990

(N) Noviembre 1990

ICONTAMINANTE l lo

| A E | A AAA HUPE Ensas

A O A a o —

SA AN ANS

ino] ojas | 0.080 == P= | | A-| 8,00. |--- | 0,880 1,88

| h | 6,87 [-- [0,18 | 8,16 04 A si ND dos nm e

| 0 e | % | Ad j A E |

roo ore = | 8,08 | | cas | Se | A a 28,58 - ES pb 17,4 E 10,0 |

| e 2 | E | Pe | qe | de | ie | e | dE E A E

| ml == is a a o (o E |

[COBRE o E 23,8 a == |- |- | =- | 22,68 | — a 15,88 | 140

| O O O E A 15,48] 29,38 |

| (40355 (23,8 [31,07 [28,74 [0,00 | 15,98 | 25,31 | 10,15 To |

| IN E E E = [== |= | Za ao

O O E o O O 0

| A A O A E ES

| ID A OL OA LOA A A E LE LD La

e o

| l | a | PS | dE | - | = aia A

E En | [e EN

majos E | | ls |

WD: No detectado

5 Muestras no disponibies Datos suministrados por Centro EULA-Chile

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, E. et al.

TABLA N* XV. Metales Pesados Analizados en Muestras Biológicas (Peso Seco).

Lugar: :Río Biobío. Estación (Nacimiento)

Fecha: :(N) Noviembre 1989

(A) Abril 1990

(AG) Agosto 1990

(N) Noviembre 1990

¡METALES PESADOS | Ud «Higado IHigado ll igado Érg. ¡Er Msgado Estónago|Higado Hígado Estónago| Per fiton|

O A Pa ala loa lolo |

| Sos a 0991 sa 18,892 == le es ss As A 8,06 |

PRERCURTO (ppa) ' | AD led NO IND NO ls ÑD HD ÑO AD | NO A

1 AG | Sa ne a 7 - [8,28 o lo e A | 8,2 (+ |

| le | ND 15% o IS | A O | EOS 1,66 |

| mM (SS a, 6h | je, 56 e ON O a e El 4,58 |

[CRONO ippal ¡A | -—- ÑO lO A WD | NO | AND | AD (e N

| E a vd, CA E DO

| CDAS A a a a RU O E

A A A A

¡COBRE (ppal ¡A | === 048 008 | 9,084 ¡8 e0s 0871 8,875 4,811 | 8,006 | ER A8S | 3,118 PA |

| jA6 OR | ES — >= 118, US | 0 2 | ===

| ¡A [16,28 3,68 | ==> us a 3, MI A a Al 33,75 |

E il

fono (pp al | [ol AN

| [46] => 9,548 | A (8,9 O | ¿88 --—- ¡ 6,988 A

| IN | =SS 8,4501 A AS If o s=> A ESA OS WD |

[PLOMO (ppa) E

ND : No detectado

0-5 Muestras no disponibles Datos suministrados por Centro EULA-Chile

Gayana Zool. 59(1), 1995.

TABLA XVI. Peso, longitud, sexo y número diploide modal en C. galusdae

Pez Peso Longitud Sexo Número Diploide Total

(2) Total (mm) 47 48 49 5051 52+

1 0.6 34.0 M a! D

2, 1.0 36.2 M 5 1 4

3 0.7 38.0 M 1 dl 3

4 0.7 805 H 1 6 3 10

5 2.0 46.1 H 1 Z 3

6 1.0 02 H 1 1 S 5)

7 0.4 33.0 H E 9

8 0.4 DD M S) 1 4

Total: PAPAS: A REALO 40

o ADD NDA AO 100.0

TABLA N* XVII. Peso, Longitud, Sexo y Número Diploide modal en P. trucha.

Pez Peso Longitud Sexo Número Diploide Total

(2) Total (mm) 41 42 43 44

1 88.2 173.0 H 1 1 2

2, 7672 165.0 H 1 6 7

3 87.2 167.0 H l 1 2

4 70.4 157.0 M 1 4 se

Total: 1 2 IZ 16

CoN OSI SCS SO 100.0

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, F. et al.

ANEXO

Tampones

Utilizados en Genypterus maculatus;, Concholepas concholepas y Tagelus dombeyii.

a) Continuos

TC pH7: Tris (0.13 M), Ac. Cítrico (0.043 M) electrodo. Diluir 1:25 para el gel.

TBV pHs8: Tris (0.5 M). Ac.Borico (0.65 M) EDTA (0.016 M) Para electrodo. Diluir 1:10 para el gel

Tris Cl pH 8.6: Tris (0.3 M) para el electrodo. Diluir 1:15 para el gel.

b) Discontinuos

TC pH 6.3-6.7: Tris base (0.223 M), Ac. Cítrico (0.086) pH6.3 para electrdo y Tris base (0.008 M)

Ac. Cítrico (0.003 M) pH 6.7 para el gel.

Utilizados en Chilina dombeyana sp.

Tampon de extracción

Tris HCl 0.05 M pH 8

Polivinil pirrolidona 400 mg/100 ml

Azul de bromofenol 5 mg/100 ml

Tampon de corrida

A. Electrodo : Tris 13.36 gr/l

Ac.Cítrico 9.50 grs/l pH 8.5

Gel : Tampon electrodo diluído 1:15

B. Electrodo : Tris 20 gr/l

Ac. Borico 10 gr/l pH 8.5

Gel : Tampon electrodo 1:1

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Iquique

Antofagasta

Caldera

Qu)

Talcahua no e]

Valdivia

Ancud fr:

FIGURA N* 1. Lugares de muestreo de las diversas especies monitoreadas:

V =Concholepas concholepas

VII Concholepas concholepas, Genypterus maculatus, Chilina dombeyana, Tagelus dombeyii, Oncoryn-

chusmykiss, Salmo trutta, Basilichthys australis, Percichthys trucha, Percichthys melanops, Cauquemauleanum,

Cheirodon galusdae.

X =Concholepas concholepas, Tagelus dombeyii.

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, F. et al.

., CONCEPCION

NE o

OCEANO PACIFICO

Los Angeles

ON a

E. P

REPUBLICA ARGENTINA

dé (6)

A ==

72200 719307 A

FIGURA N* 2. Lugares de muestreo en el río Biobío. Ver texto: 1 Desembocadura; 2 Santa Juana; 3 Nacimiento; 4

Negrete; 5 Puente Callaqui (Santa Barbara); 6 Laguna Galletué; 7 Laguna Icalma.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

4 ?

ñ Sd E

6.00 Y A

5.50 e

5.00 A e

4.50 2

7 Y

4.00 y 7%

yd ed

3.50 14 Ze

3.00 IS

250 4 4

E Y

Y e

2.00 e

Y y

150 Y ed

y A

1.00 7

/ 7

0.50 O / MEDIO

AAA

oo de AT

O. mikyss S.trutta B.australis Ptruche Pmelanops C.mauleanum

FIGURA N? 3. Frecuencia de MN presentes en los eritrocitos de peces muestreados en 3 sectores (Alto, Bajo, Medio)

del río Biobío.

Características genéticasrecursos acuáticos, VIII Región, Chile: ALay, F. et al.

_METACENTRICOS (1-3) SUBMETACENTRICOS (4-6)] — [SUBTELOCENTRICOS (7-8)]

. AN E Y Y 11)

ACRO-TELOCENTRICOS (9-25)

o rra Jo cs cre do e o ica lu MS Ca, o ms e

ó e)

FIGURA N* 4. Cariotipo de Cheirodon galusdae

ACRO-TELOCENTRICOS (1-44) |

43 e. 40 Il et dd M0 1d

6d MO 45 an 60 44

FIGURA N? 5. Cariotipo de Percichthys trucha

Dirt

e ms a ar

Gayana Zool. 59(1): 73-96, 1995.

ISSN 0016-531X

BIODIVERSIDAD DE EQUINODERMOS CHILENOS: ESTADO ACTUAL

DEL CONOCIMIENTO Y SINOPSIS BIOSISTEMATICA.

BIODIVERSITY IN CHILEAN ECHINODERMS: STATE OF THE ART

AND BIOS YSTEMATIC SYNOPSIS

Alberto Larrain P.*

RESUMEN

Este trabajo contiene un diagnóstico actualizado del

conocimiento sobre la biodiversidad y estado de cono-

cimiento de los equinodermos chilenos, incluyendo el

estado de conservación de las pocas especies explota-

das en este grupo de invertebrados exclusivamente ma-

rinos. Se entregan los nombres y la clasificación de 14

crinoídeos, 109 asteroídeos, 89 ofiuroídeos, 64 equi-

noídeos y 74 holoturoídeos, actualmente bajo revisión

taxonómica. Estas 350 especies nominales registradas

a lo largo de la costa del país, islas oceánicas, fauna de

profundidad y Antártica entre los 45” y 90” W, repre-

sentan alrededor del 5 % de la fauna mundial conocida

de equinodermos recientes (en total unas 6.000 espe-

cies). Aún cuando las primeras referencias sobre equi-

nodermos chilenos datan de comienzos del siglo

XVIII, se los conoce principalmente a través de los re-

sultados de las expediciones oceanográficas de fines

del siglo XIX y principios de éste. Se han hecho pocos

trabajos monográficos sobre esta interesante fauna.

Los recursos biosistemáticos incluyen colecciones de-

positadas en museos extranjeros (Museo Británico de

Londres, Museo Nacional de Estados Unidos, Museo

de París, Universidad de Lund) y las del Museo Nacio-

nal de Historia Natural de Chile, en Santiago. Entre las

colecciones universitarias debe mencionarse la Sala de

Sistemática de la Facultad de Ciencias Biológicas de la

Universidad Católica en Santiago (SSUC), pero la ma-

yor colección del país es la depositada en el Museo del

Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción (UCCC), en la que hay cerca de 4.000 especíme-

nes catalogados pertenecientes a más de 150 especies,

que representan algo menos del 50% de la fauna chile-

*Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción.

ABSTRACT

This paper contains a diagnosis of the current know-

ledge of the biodiversity of Chilean echinoderms, in-

cluding the conservation status of the few commercial

species of this exclusively marine group of invertebra-

tes. Names and classification of some 14 crinoids, 109

asteroids, 89 ophiuroids, 64 echinoids and 74 holothu-

roids, currently under taxonomic revision, are given.

These 350 nominal species, recorded along the coast

of the country, oceanic islands, deep fauna, and An-

tarctica between 45” and 90” W, represent roughly 5%

of the known world fauna of living echinoderms (some

6.000 species). Although references date back to the

early 18th Century, Chilean echinoderms are known

mainly through reports of oceanographic expeditions

of the turn of the 20th Century. Few attempts have

been made to monograph this interesting fauna.

Biosystematic resources include collections deposited

in foreign Museums (1.e. British Museum, U.S. Natio-

nal Museum, Paris Museum, Lund University) and co-

llections at the Museo Nacional de Historia Natural in

Santiago. Among local Universities, mention must be

made of the collection in the Sala de Sistemática, Fa-

cultad de Ciencias Biológicas, Universidad Católica de

Chile (SSUC), but the largest collection by far in the

country is deposited in the Departamento de Zoología,

Universidad de Concepción (UCCC), containing over

4.000 catalogued specimens of more than 150 species,

representing almost half of the known Chilean species.

Other than the author and P. Sánchez (Catholic Uni-

versity), there are only two known occasionally active

specialists with specialized libraries, research projects

in progress, or currently publishing in biosystematics

of the group in Chile (i.e. H. Andrade, P. Báez). Fo-

reign specialists are numerous and can be reached th-

rough the informal Echinoderms Newsletter,

distributed by the U.S. National Museum, Smithsonian

Institution, Washington, D.C., U.S.A. The edible sea-

urchin (Loxechinus albus Molina, 1782), under increa-

singly heavier exploitation in the last 20 years, is

inefficiently protected by legislation regulating mini-

mum size (7 cm h.d.) and season (harvesting is only

Gayana Zool. 59(1), 1995.

na conocida. Además del autor y de P. Sánchez (Uni-

versidad Católica), hay sólo dos especialistas conoci-

dos con bibliotecas especializadas, proyectos

actualmente en curso o publicaciones recientes sobre

la biosistemática del grupo en Chile (H. Andrade y P.

Báez). Hay numerosos especialistas extranjeros, que

pueden ser contactados a través de la publicación in-

formal Echinoderms Newsletter, distribuida por el Mu-

seo Nacional de E.U., Smithsonian Institution de

Washington, D.C. El erizo comestible (Loxechinus al-

bus Molina, 1782), bajo creciente presión de pesca en

los últimos 20 años, está protegido por legislación ine-

ficiente, que reglamenta el tamaño mínimo de extrac-

ción (7 cm de diámetro) y la temporada de pesca (entre

el 15 de enero y 15 de octubre de cada año), excepto

en el extremo sur del país, en donde rige solamente el

tamaño mínimo. Algunos esfuerzos para cultivar lar-

vas y juveniles con el objeto de repoblar los bancos

afectados han producido resultados promisorios, pero

no son empleados aún en forma permanente. Otros

equinodermos bajo explotación creciente en los últi-

mos dos años son dos especies de holoturias de la in-

fauna intermareal y de aguas someras. La falta de

información sobre su biología poblacional y el tamaño

de los stocks no permite predecir los efectos de la ex-

tracción sobre las poblaciones locales. Lamentable-

mente, no existe reglamentación general sobre la

recolección de invertebrados intermareales y subma-

reales en el país. No se ha intentado ninguna evalua-

ción del posible efecto de colectores ocasionales, pero

el incremento en la utilización de playas por los turis-

tas debe ser vigilado. La educación del público y la

eventual reglamentación de la recolección deberían ser

consideradas en el futuro cercano para prevenir efectos

indeseables sobre las comunidades costeras. Desafor-

tunadamente no se han establecido aún en el país los

parques marinos, otra medida que puede contribuir a la

disminución de este peligro a través de la mantención

de áreas protegidas para reproducción y reclutamiento.

PALABRAS CLAVES: Biodiversidad, equinodermos, Bio-

sistemática, Chile, Pacífico sureste, Antárctica.

INTRODUCCION

El Phylum Echinodermata está constituido

por un grupo de organismos exclusivamente ma-

rinos, principalmente bentónicos, solitarios, de

simetría preferentemente radial pentámera, con

endoesqueleto calcáreo formado por placas de

calcita cristalina que frecuentemente llevan espi-

nas, con un sistema de sacos y canales llenos de

fluido que funciona como esqueleto hidráulico,

aparato locomotor y con otras funciones acceso-

rias. Se agrupan en cuatro subphyla, de los cuales

dos (Homalozoa y Crinozoa) aparecen muy tem-

pranamente en el registro fósil (Cámbrico). Sólo

allowed between Jan. 15 and Oct. 15 each year), ex-

cept in the southernmost region, where only minimum

size regulations apply. Efforts to culture larvae or ju-

veniles to artificially repopulate diminished stocks

seem promisory, although not as yet established as a

permanent practice. Other echinoderms under exploita-

tion in the last few years are two large intertidal and

shallow-water infaunal holothuroids. Lack of informa-

tion on their population biology and size of stocks pre-

vent prediction of possible effects of harvesting on

local populations. General regulations involving inter-

tidal and subtidal collecting of invertebrates are sorely

lacking in the country. Evaluation of possible effects

of beach collecting has not been attempted, but increa-

sing utilization of beaches by tourists should be moni-

tored. Education of the general public and eventual

regulation of occasional extraction to prevent delete-

rious effects on communities should be considered in

the near future. Unfortunately, marine parks, another

remedial solution to these possible dangers, have not

as yet been established in Chile.

Keywords: Biodiversity, echinoderms, Biosystematics,

Chile, Southeastern Pacific, Antarctica.

tres subphyla tienen representantes recientes (As-

terozoa, Echinozoa, y Crinozoa). Las 5 clases vi-

vientes son: Stelleroidea, con dos subclases,

Asteroidea, "estrellas de mar" y Ophiuroidea,

"ofiuros”; Echinoidea, "erizos de mar"; Holothu-

roidea, "pepinos de mar"; Crinoidea, "lirios de

mar"; Concentricycloidea, "margaritas de mar”,

una clase recientemente descubierta. Estas cinco

clases incluyen aproximadamente 6.000 especies

conocidas, que se reparten por todos los océanos

del mundo, desde el intermareal hasta los am-

bientes hadales. Las aproximadamente 16 clases

extintas de Homalozoa, todas del Paleozoico, in-

cluyen unas 13.000 especies fósiles conocidas

(Pawson, 1982).

Las primeras menciones sobre equinoder-

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

mos chilenos se hallan en la obra de Feuillée

(1714) basada en el viaje que éste realizó a Chile

entre los años 1709 y 1711. La primera publica-

cion sistemática post-Lineana en la que aparecen

equinodermos chilenos es la de Molina, quien

describió dos erizos intermareales regulares

(1782) y mencionó estrellas y erizos irregulares

(1810). Algunos años después, Hupé (1854) des-

cribió tres holoturias, cuatro erizos, cuatro estre-

llas y un crinoídeo, en la primera relación con

representantes chilenos de los tres subphyla de

equinodermos recientes. Excepto por algunos tra-

bajos de especialistas norteamericanos y euro-

peos en los distintos grupos publicados en la

primera mitad del siglo diecinueve, en Chile es

Philippi (1845, 1857, 1858, 1860, 1870, 1887,

1892, 1898) quien mayormente publica, por más

de medio siglo, descripciones de nuevas especies

y de las ya conocidas, avanzando con ello signifi-

cativamente el conocimiento sobre este grupo de

invertebrados en Chile.

Durante las últimas décadas del siglo dieci-

nueve y la primera mitad de este siglo, diversos

especialistas europeos y norteamericanos empie-

zan a dar a conocer en forma sistemática la fauna

de invertebrados marinos de Chile y Antártica,

en extensos tratados con los resultados de expe-

diciones científicas. Entre las más importantes

están las del "Challenger" y "Discovery", y más

recientemente las de la Universidad de Lund y de

la Royal Society of London. De éstos, los traba-

jos más significativos, por la fauna de equinoder-

mos chilena y antártica que incluyen, son los de

Agassiz (1879, 1881), Carpenter (1884, 1888),

Fisher (1911, 1928, 1930, 1931, 1940), Hertz

(1927), Koehler (1900, 1901, 1906, 1908, 1911,

1912a, 1912b, 1920, 1926), Leipoldt (1895), Ly-

man (1878, 1879, 1882), Madsen (1956), Meiss-

ner (1896a, 1896b, 1900), Mortensen (1910,

1924, 1936, 1950, 1952), Pawson (1964, 1966,

1969a, 1969b), Perrier (1904, 1905), Sladen

(1889), Théel (1882, 1886), Vaney (1906, 1909,

1914).

Mención aparte merecen el trabajo sobre los

equinodermos de Perú de H.L. Clark (1910), que

incluyó equinodermos de la Provincia Peruano-

Chilena, y el monumental trabajo sobre los equi-

noídeos de Mortensen (1928-1951) en que se

tratan varias especies chilenas.

Más recientemente se han publicado infor-

mes y listas de especies de equinodermos, inclu-

yendo distribución y zoogeografía de la fauna

antártica (Dearborn y Rommel, 1969; Pawson,

1969b, 1969c; Fell y Dawsey, 1969), nuevos re-

gistros y especies de Chile insular (Fell 1975,

Codoceo, 1976; DiSalvo et al. 1988; para una re-

visión bibliográfica actualizada ver Robaczylo y

Castilla, 1987) y estudios bentónicos de fauna in-

fralitoral, circalitoral y batial (Yáñez, 1971; Yá-

ñez y Castillo, 1973; Codoceo y Andrade, 1987)

en que se citan equinodermos.

Hay una gran deficiencia en cuanto a revi-

siones taxonómicas del grupo. Sólo se ha publi-

cado hasta ahora una contribución que revisa una

parte de los ofiuroídeos chilenos (Castillo, 1968)

y una monografía sobre erizos regulares chilenos

que incluye fósiles y recientes (Larrain, 1975).

Esto contrasta, por ejemplo, con el conocimiento

actual sobre la fauna argentina a través de las nu-

merosas publicaciones de Bernasconi entre los

años 1920 y 1980, de las que destacan su Mono-

grafía de 1953. Aun cuando el conocimiento ac-

tual de la fauna es incompleto, será muy útil la

elaboración de un catálogo crítico para los equi-

nodermos del Pacífico Sud-Oriental, semejante al

publicado por Maluf (1988) para los del Pacífico

Centro-Oriental, desde Perú hasta California. Las

listas de especies que se adjuntan son parte de un

proyecto similar actualmente en marcha (Larrain,

en preparación), que tiene por objetivo final la

revisión taxonómica de todos los equinodermos

chilenos.

Las colecciones de Equinodermos con valor

biosistemático disponibles en Chile son solamen-

te tres. El Museo Nacional de Historia Natural,

en Santiago, posee la de mayor importancia his-

tórica, un verdadero hito en la historia de las co-

lecciones científicas, cuyo catálogo fue publicado

por Quijada (1911). En éste aparecen 145 espe-

cies de equinodermos, varias de las cuales habían

sido dejadas por Philippi. Lamentablemente, al-

gunas identificaciones son poco confiables, mu-

chas son nomina nuda dejada por Philippi y, de

un total de 280 especímenes, solamente 123 son

chilenos. El resto de la colección de equinoder-

mos del Museo incluye material legado por nu-

merosos investigadores y algunos duplicados de

la expedición del H.M.S. "Challenger" donados

por el Museo Británico (Mostny y Niemeyer,

1983). Ultimamente han sido depositados allí va-

rios lotes conteniendo principalmente equinoder-

mos, no catalogados ni identificados, de

colecciones hechas por el "Goden Wind" y "Ake-

bonu Maru”. Por otra parte, la Sala de Sistemáti-

Gayana Zool. 59(1), 1995.

ca de la Facultad de Ciencias Biológicas de la

Universidad Católica (Santiago) posee una colec-

ción catalogada pero no totalmente identificada

de 381 lotes, de los cuales 189 son asteroídeos,

91 equinoídeos, 52 holoturoídeos y 49 ofiuroí-

deos (Sánchez, in litt.). Sin duda la colección

más completa es la mantenida por el autor en el

Museo de Zoología de la Universidad de Con-

cepción (UCCC). En ella hay depositadas un to-

tal de 3.922 especímenes catalogados e

identificados, pertenecientes a 151 especies, de

las cuales 11 son crinoídeos, 6 holoturoídeos, 56

equinoídeos, 15 ofiuroídeos y 63 asteroídeos.

Una importante colección con más de 1000 espe-

címenes, recientemente legada por una expedi-

ción germano-ítalo-chilena a la zona del Estrecho

de Magallanes, está siendo identificada e ingresa-

da actualmente. Existe además una importante

cantidad de material antártico no identificado

completamente que se encuentra bajo revisión.

En el extranjero poseen material chileno en

cantidad variable los más importantes museos del

mundo, entre los cuales están el British Museum

(principalmente colecciones del "Challenger" y

"Discovery"), el Museo de Zoología Comparada

de Harvard (material antártico), el Museo de His-

toria Natural de París (material antártico), el Mu-

seo Zoológico de Copenhague (material reunido

por Th. Mortensen y sus seguidores), el Alfred

Wegener Institut en Bremerhaven (material an-

tártico) y principalmente el U.S. National Mu-

seum, Smithsonian Institution, en Washington,

que tiene la más completa colección de equino-

dermos del mundo, incluidos Chile continental,

insular y Antártica.

SUBPHYLUM CRINOZOA

CLASE CRINOIDEA o "Lirios de mar"

La Clase tiene cinco Subclases. Cuatro de

éstas están extintas y una sola (Articulata) reúne

623 especies vivientes conocidas. De éstas unas

550 pertenecen al Orden Comatulida, el mejor re-

presentado en Chile, y las restantes están agrupa-

das en los Ordenes Millericrinida, Cyrtocrinida,

Bourgueticrinida e Isocrinida. De estos últimos

cuatro, sólo el primero tiene representantes en

Chile.

No existen trabajos o catálogos sobre crinoí-

deos chilenos. La primera referencia corresponde

a la de Hupé (1854), pero lamentablemente es

imposible asegurar a qué especie pertenece su

Comatula picta. Una buena parte de las especies

conocidas fueron citadas por Carpenter (1888),

pero la primera obra sinóptica es la de Dearborn

y Rommel (1969) que reúne esencialmente las

especies antárticas y subantárticas, listando una

buena parte de los registros chilenos conocidos

hasta entonces.

La lista siguiente contiene las 14 especies de

crinoídeos conocidos de aguas chilenas y antárti-

cas entre los 43* y 90% W. Los números en parén-

tesis indican la referencia bibliográfica al final de

la lista de especies (ver también Literatura cita-

da).

LISTA SINOPTICA Y CLASIFICACION DE CRINOIDEOS RE-

GISTRADOS PARA CHILE.

SUBPHYLUM CRINOZOA MATSUMOTO,

1929

CLASE CRINOIDEA MILLER, 1821

SUBCLASE ARTICULATA ZITTEL, 1879

ORDEN COMATULIDA, A.H.CLARK, 1908

Familia Antedonidae Norman, 1865

Subfamilia Heliometrinae A.H.Clark, 1909

Anthometra adriani (Bell, 1908) (1)

Florometra antarctica (Carpenter, 1888) (2)

Florometra mawsoni A.H. Clark, 1913 (1)

Florometra sp. (2)

Promachocrinus kerguelensis Carpenter, 1879

(1)

Solanometra antarctica (Carpenter, 1888) (2,3)

Subfamilia Zenometrinae A.H. Clark, 1909

Eumorphometra fraseri Dilwyn-John, 1938 (2)

Eumorphometra sp. (2)

Subfamilia Isometrinae A.H. Clark, 1917

Isometra graminea Dilwyn-John, 1938 (1,2)

Isometra vivipara Mortensen, 1918 (1)

Isometra hordea Dilwyn-John, 1938 (1)

Familia Notocrinidae Mortensen, 1918

Notocrinus mortenseni Dilwyn-John, 1938 (1)

Notocrinus virilis Mortensen, 1917 (1)

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

ORDEN MILLERICRINIDA SIEVERTS-DO-

RECK 1952

SUBORDEN HYOCRININA RASMUSSEN,

1978

Subfamilia Hyocrininae Carpenter, 1884

Ptilocrinus antarcticus Bather, 1908 (1)

(1) = Dearborn y Rommel, 1969

(2) = Larrain (en preparación)

(3) = Codoceo y Andrade, 1980

RECURSOS HUMANOS Y LOGISTICOS.

No existe manual ni trabajo sinóptico sobre

los crinoídeos chilenos. La fauna registrada, sola-

mente unas 14 especies, es seguramente sólo una

fracción de las especies presentes en Chile y An-

tártica. Su escasa representación en las coleccio-

nes obedece a las dificultades que presenta

colectar estos organismos, por lo que su número

debería aumentar con el tiempo. Excepto por el

autor, no existen en Chile especialistas conocidos

en el grupo, con literatura, capacidad o experien-

cia taxonómica. La única colección con valor

biosistemático en el país la constituye un total de

11 especies en 46 lotes y un total aproximado de

120 especímenes, en la Colección del Museo de

Zoología de la Universidad de Concepción

(UCCC).

ASPECTOS BIOLOGICOS, ECOLOGICOS Y ESTADO DE

CONSERVACION.

La mayor parte de los crinoídeos registrados

corresponden a comátulas, principalmente de vi-

da libre, en altas latitudes y Antártica. Excepto

los datos de colección, que permiten esbozar en

forma preliminar sus distribuciones, no existe

otra información sobre estos organismos en

Chile.

SUBPHYLUM ASTEROZOA

CLASE STELLEROIDA

SUBCLASE ASTEROIDEA

o "Estrellas de mar"

La Subclase tiene cinco órdenes, 32 fami-

lias, unos 300 géneros y 1500 especies (Fell,

1982). Sólo un orden (Platyasterida) no está re-

presentado en Chile.

La primera revisión de estrellas chilenas se

halla en el trabajo de Miller y Troschel (1840).

En el se mencionan 4 especies descritas o men-

cionadas por Lamarck (1816), Meyen (1834), y

Valenciennes (1846). Entre los trabajos mas re-

cientes se encuentra la obra de Madsen (1956) en

que señala 36 especies de estrellas en el litoral de

Chile continental e insular, aunque su revisión no

incluyó exhaustivamente todos los registros ante-

riores (i.e. Sladen, 1889). De éstas, las especies

intermareales y submareales litorales más cono-

cidas en la región del Norte Grande (Provincia

Peruano-Chilena) son cinco (Viviani, 1978), que-

dando la mayor diversidad en la zona Central y

Sur del Pacífico Sudoccidental, especialmente al

sur de la Isla de Chiloé (Región Subantártica).

De éstas, más de 20 especies (Madsen 1956) son

compartidas con la costa Atlántica Sud-Oriental,

constituyendo la fauna de la Provincia Magallá-

nica (según Hedgpeth, 1969; ver por ejemplo

Bernasconi 1962, 1963, 1964).

Un par de especies nuevas de asteroídeos li-

torales han sido descritas más recientemente

(Moyano y Larrain, 1976; Codoceo y Andrade,

1981) y algunos trabajos sobre bentos profundo

del talud de la zona central (Codoceo y Andrade

1978; Andrade 1987; Andrade et al., 1980) listan

un total de 20 especies, varias de las cuales co-

rresponden a especies que en las Regiones Maga-

llánica y Antártica son litorales.

El total de especies antárticas conocidas su-

pera las 230 (Fell y Dawsey, 1969), algunas de

las cuales alcanzan a la Provincia Magallánica

(zona de los canales magallánicos) y como se di-

ce arriba, hasta latitudes intermedias frente a la

costa de Chile Central, como fauna batial o abi-

sal.

La fauna insular oceánica conocida está

constituida por unas diez especies (cuatro en I. de

Pascua y seis en I. J. Fernández), todas interma-

reales o de profundidades someras (Castilla y

Robaczylo, 1987; Robaczylo y Castilla, 1987;

Disalvo et al., 1988).

La lista siguiente contiene las 109 especies

de asteroídeos chilenos conocidos, incluyendo la

Región Antártica, especialmente la Subregión de

Scotia y la Subregión Antártica Continental

(Hedgpeth, 1969), entre los 45* y 90% W. Esta lis-

ta se ha compilado incluyendo la literatura más

reciente disponible, recurriendo a las fuentes ori-

ginales en los casos dudosos, principalmente las

últimas expediciones (1.e. Fisher, 1940). Sin em-

bargo, como este trabajo no es producto de una

Gayana Zool. 59(1), 1995.

revisión taxonómica acabada, contiene informa-

ción bibliográfica resumida (por ejemplo Fell y

Dawsey, 1969) y podría contener errores de iden-

tificación (señalados como err?) y sinónimos (se-

ñalados sinon?). Se han exceptuado algunas

especies dudosas, registradas por las expedicio-

nes más antiguas, que han sido colectadas una

sola vez, que en algunos casos han sido sinonimi-

zadas y que por lo tanto no han sido incluidas en

los trabajos posteriores, como por ejemplo el de

Madsen (1956). Se incluye además parte de un

trabajo no publicado (Larrain, en preparación)

que comprende aproximadamente 40 especies de

asteroídeos colectados por expediciones recientes

en la Provincia Magallánica y Región Antártica,

depositadas o en proceso de ser depositadas en la

Colección del Museo de Zoología de la Universi-

dad de Concepción (UCCC). La clasificación si-

gue a Spencer y Wright (1966), con algunas

modificaciones sugeridas por Gale (1987). Los

números en paréntesis indican la referencia bi-

bliográfica al final de la lista de especies (ver

también Literatura citada).

LISTA SINOPTICA Y CLASIFICACION DE ASTEROIDEOS

REGISTRADOS PARA CHILE.

SUBPHYLUM ASTEROZOA HAECKEL, 1895

CLASE STELLEROIDEA LAMARCK, 1816

SUBCLASE ASTEROIDEA BLAINVILLE,

1830

ORDEN PAXILLOSIDA PERRIER, 1884

SUBORDEN DIPLOZONINA Spencer y

Wright, 1966

Familia Luididae Verrill, 1899

Luidia (Alternaster) magellanica Leipoldt,

[SOSAMEZ ALO)

Luidia porteri A.H. Clark, 1917 (1)

Luidia (Alternaster) superba A.H. Clark, 1917

(10)

Familia Astropectinidae Gray, 1840

Subfamilia Astropectininae Gray, 1840

Astropecten triseriatus Múller y Troschel, 1843

(err?) (8)

Astropecten polyacanthus Miller y Troschel,

1842 (9)

Bathybiaster loripes Sladen, 1889 (1,6,7)

Bathybiaster loripes obesus Sladen, 1889 (7)

Leptychaster (Leptychaster) kerguelensis

Smith, 1876 (7)

Leptychaster (Leptychaster) magnificus (Koeh-

ler, 1912) (7)

Psilaster charcoti (Koehler, 1906) (2,7)

SUBORDEN CRIBELLINA Fisher, 1911

Familia Goniopectinidae Verrill, 1889

Subfamilia Ctenodiscinae Sladen, 1889

Ctenodiscus procurator Sladen, 1889 (1,6)

Familia Porcellanasteridae Sladen, 1883

Eremicaster crassus gracilis (Sladen, 1883)

(10)

Eremicaster pacificus (Ludwig, 1905) (10)

Eremicaster vicinus (Ludwig, 1905) (10)

Styracaster monacanthus Ludwig, 1907 (10)

SUBORDEN NOTOMYOTINA Ludwig, 1910

Familia Benthopectinidae Verrill, 1894

Luidiaster planetus (Sladen 1889) (6)

Luidiaster gerlachei (Ludwig, 1903) (7)

ORDEN VALVATIDA PERRIER, 1884

SUBORDEN GRANULOSINA Perrier, 1894

Familia Odontasteridae Verrill, 1889

Odontaster penicillatus (Philippi, 1870) (1,2,6)

Odontaster capitatus Koehler, 1912 (7)

Odontaster meridionalis (Smith, 1876) (7)

Odontaster validus Koehler, 1906 (6,7)

Asterodon singularis (Miller y Troschel, 1843)

(1,6,7)

Asterodon granulosus Perrier, 1891 (6)

Acodontaster elongatus elongatus (Sladen,

1889) (2)

Acodontaster elongatus granuliferus (Koehler,

1912) (2)

Acodontaster conspicuus (Koehler, 1920) (7)

Acodontaster marginatus (Koehler, 1912) (7)

Acodontaster waitel (Koehler, 1920) (7)

Familia Goniasteridae Forbes, 1841

Subfamilia Goniasterinae Forbes, 1841

Ceramaster patagonicus (Sladen 1889) (2,3)

Pergamaster incertus (Bell, 1908) (7)

Pergamaster synaptorus Fisher, 1940 (7)

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

Subfamilia Hippasteriinae Verrill, 1899

Hippasteria hyadesi Perrier, 1891 (2,3)

Cryptopeltaster philippi Codoceo y Andrade,

1981 (2)

Subfamilia Pseudarchasterinae Sladen, 1889

Pseudarchaster discus Sladen, 1889 (2,6)

Familia Ophidiasteridae Verrill, 1867

Ophidiaster agassizi Perrier, 1881 (err?) (1)

Ophidiaster easterensis Ziesenhenne, 1963

(4,5,6)

Leiaster leachi (Gray, 1840) (9)

ORDEN SPINULOSIDA PERRIER, 1884

SUBORDEN EUGNATHINA Spencer y

Wright, 1966

Familia Solasteridae Perrier, 1884

Solaster regularis Sladen, 1889 (1,2,6,7)

Cuenotaster involutus (Koehler, 1912) (7)

Lophaster stellans Sladen, 1889 (1,2,6,7)

Lophaster densus (Sladen, 1889) (7)

Lophaster gaini Koehler, 1912 (6,7)

Paralophaster antarcticus (Koehler, 1912)

(2,7)

Paralophaster godfroyi (Koehler, 1912) (7)

Familia Korethrasteridae Danielsson y Koren,

1884

Peribolaster folliculatus Sladen, 1889 (1,7)

Anareaster gourdoni (Koehler, 1912) (7)

Familia Pterasteridae Perrier, 1875

Pteraster (Pteraster) lebruni Perrier, 1891 (1,7)

Pteraster (Retaster) gibber (Sladen 1889)

(1,6,7)

Pteraster (Apterodon) stellifer Sladen, 1889

(6,7)

Calyptraster tenuissimus Bernasconi, 1966 (6)

Diplopteraster verrucosus (Sladen, 1889) (2)

SUBORDEN LEPTOGNATHINA Spencer y

"Wright, 1966

Familia Asterinidae Gray, 1840

Subfamilia Asterininae Gray, 1840

Asterina stellifer var obtusa Leipoldt, 1895 (1)

Asterina chilensis (Litken, 1859) (1,6,10)

Asterina modesta Verrill, 1869 (10)

Patiria obesa (H.L.Clark, 1910) (1,6)

Patiriella calcarata (Perrier, 1869) (1,4,6)

Patiriella fimbriata (Perrier, 1876) (1,6,7)

Subfamilia Anseropodinae Fisher, 1903

Kampylaster incurvatus Koehler, 1920 (6,7)

Familia Ganeriidae Sladen, 1889

Ganeria falklandica Gray, 1847 (1,6)

Cycetra verrucosa verrucosa (Philippi, 1857)

(1,6,7)

Cycetra verrucosa mawsoni A.M. Clark 1962

(6)

Cycetra cingulata Koehler, 1923 (6)

Perknaster aurantiacus Koehler, 1912 (7)

Perknaster aurorae (Koehler, 1920) (7)

Perknaster fuscus Sladen 1889 (7)

Perknaster sladeni (Perrier, 1891) (7)

Familia Poraniidae Perrier, 1894

Porania antarctica Smith, 1876 (1,6)

Porania glabra Sladen, 1889 (7) (err? o sinon?)

Familia Echinasteridae Verrill, 1867

Henricia obesa (Sladen, 1889) (1.6.7)

Henricia studeri (Perrier, 1891) (1.2.6)

Henricia diffidens Koehler, 1923 (7)

Henricia hyadesi (Perrier, 1891) (7) (sinon?)

Henricia pagenstecheri (Studer, 1885) (6,7)

Poraniopsis echinaster Perrier, 1891 (1,2,6)

Poraniopsis mira (De Loriol, 1904) (6)

Rhopiella koehleri Fisher, 1940 (6,7)

Rhopiella smithi (err?X(sinonim?) (7)

ORDEN FORCIPULATIDA PERRIER, 1884

SUBORDEN ASTERIADINA Fisher, 1928

Familia Heliasteridae Viguier, 1878

Heliaster helianthus (Lamarck, 1816) (1.4.6,10)

Heliaster canopus Perrier, 1875 (1,4)

Familia Asteriidae Gray, 1840

Subfamilia Asteriinae Gray, 1840

Allostichaster capensis (Perrier, 1875) (1,4)

Anasterias antarctica (Littken. 1856) (1.2.6.7)

Anasterias minuta (Perrier, 1875) (1)

Anasterias pedicellaris (Koehler, 1923) (6)

Anasterias rupicola (err? sinon?) (7)

Anasterias sphaerulata (err? sinon?) (7)

Anasterias studeri Perrier, 1891 (7)

Anasterias varium (Philippi, 1870) (1,2,6)

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Astrostole platei (Meissner, 1896) (1,4)

Astrostole paschae (H.L.Clark, 1920)

Coscinasterias candicans (exr?) (7)

Coscinasterias victoriae Koehler, 1911 (7)

Cosmasterias lurida (Philippi, 1858) (1,2,6,7)

Cosmasterias polygramma (err?) (7)

Cosmasterias tomidata (sinon? fide (1)) (7)

Cryptasterias turqueti (Koehler, 1906) (7)

Diplasterias brandti (Bell, 1881) (1,7)

Diplasterias brucei (Koehler, 1908) (sinon?)

(7)

Granaster nutrix (Studer, 1885) (7)

Lysasterias belgicae (Ludwig, 1903) (sinon?)

(7)

Lysasterias chirophora (Ludwig, 1903) (si-

non?) (7)

Lysasterias hemiora Fisher, 1920 (7)

Lysasterias heteractis Fisher, 1920 (7)

Lysasterias joffrei (Koehler, 1920) (7)

Lysasterias perrieri (Studer, 1885) (6,7)

Meyenaster gelatinosus (Meyen, 1834) (1,6,10)

Neosmilaster steinent (Studer, 1885) (1,7)

Neosmilaster georgianus (Studer, 1885) (7)

Notasterias armata Koehler, 1911 (7)

Notasterias bongraini (Koehler, 1912) (7)

Notasterias stolophora Fisher, 1940 (7)

Psalidaster mordax Fisher, 1940 (6)

Stichaster striatus Múller y Troschel, 1840

(1,6,10)

Smilasterias triremis (Sladen,1889) (7)

Stylasterias paschae Clark, 1920 (5)

Subfamilia Pedicellasterinae Fisher, 1918

Pedicellaster hypernotius (7)

Subfamilia Labidiasterinae Verril, 1914

Labidiaster annulatus (Sladen, 1889) (6,7)

Labidiaster radiosus Litken, 1871 (1,7)

SUBORDEN ZOROCALLINA Downey, 1970

Familia Zoroasteridae Sladen, 1889

Doraster qawashgari Moyano y Larrain, 1976

(2,6)

SUBORDEN BRISINGINA Fisher, 1928

Familia Brisingidae Sars, 1875

Freyella benthophila Sladen, 1889 (10)

Odinella nutrix Fisher, 1940 (7)

(1) = Madsen, 1956

(2) = Andrade, 1987

(3) = Bernasconi, 1963

(4) = Robaczylo y Castilla, 1987

(5) = Codoceo, 1974

(6) = Larrain, en preparación

(7) = Fell y Dawsey, 1969

(8) = Castilla y Robaczylo, 1987

(9) = DiSalvo et al., 1988

(10) = Maluf, 1988

RECURSOS HUMANOS Y LOGISTICOS.

La Subclase Asteroidea constituye un grupo

altamente diversificado en nuestro litoral, sobre

el cual no existe un tratado o manual actualizado

con información biosistemática sinóptica confia-

ble. Existen proyectos biosistemáticos de larga

data, cuyos resultados no han sido publicados

(Sánchez, com. pers.), y otros actualmente en de-

sarrollo (Larrain, en preparación).

Las colecciones disponibles con valor bio-

sistemático están constituidas por 189 lotes en la

Sala de Sistemática, Facultad de Ciencias Bioló-

gicas, Universidad Católica de Chile (SSUC) y

por 63 especies con un total de 813 especímenes

en la Colección del Museo de Zoología de la

Universidad de Concepción (UCCC).

ASPECTOS BIOLOGICOS, ECOLOGICOS Y ESTADO DE

CONSERVACION.

Existen pocos trabajos publicados y algunos

manuscritos no publicados sobre la biología de

las especies más comunes del litoral continental

(Bay-Schmith, 1975; Muñoz y Vega, 1987;

Werlinger 1981, 1983, 1987; Viviani, 1978), pe-

ro la información es insignificante considerando

la enorme biodiversidad registrada. Cabe señalar

que la mayoría de las especies de asteroídeos

ocupan lugares superiores de las cadenas alimen-

tarias, como depredadores más o menos selecti-

vos, por lo que tienen roles importantes en la

estructuración de las comunidades litorales y

sublitorales.

Aunque se desconoce la incidencia de las

actividades de recolectores ocasionales en el in-

termareal rocoso sobre algunas estrellas estética-

mente atractivas (Heliaster, Meyenaster,

Stichaster, Patiria), con el aumento del turismo y

las poblaciones costeras ésta constituye una ame-

naza potencial que debería ser evaluada, espe-

cialmente ya que no existe en el país una

conciencia popular sobre la necesidad de prote-

ger y respetar los invertebrados acuáticos. El au-

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

tor ha observado en repetidas ocasiones numero-

sos ejemplares de Heliaster extraídos por turistas

del intermareal y abandonados después sólo para

descomponerse. Estas prácticas podrían tener

efectos significativos si se combinan una fuerte

presión antrópica con fluctuaciones poblaciona-

les ocasionadas por fenómenos naturales como

"El Niño", que influyen sobre las poblaciones,

haciéndolas más vulnerables y cambiando sus há-

bitos alimentarios y de desplazamiento, como

han encontrado Muñoz y Vega (1987) en S. stria-

tus.

SUBCLASE OPHIUROIDEA u "Ofiuros"

La subclase tiene cuatro órdenes, con 37 fa-

milias. Uno de ellos (Stenurida) contiene sola-

mente fósiles del Paleozoico y un segundo

(Oegophiurida) sólo una especie reciente. Los

dos órdenes restantes suman en total 17 familias,

275 géneros y unas 2000 especies (Fell, 1982).

Ambos están representados en Chile.

El trabajo póstumo de Mortensen sobre el

material de la Expedición Lund (1952) menciona

13 especies para la fauna somera (menos de 250

m) de Chile continental, siete de las cuales son

nuevos registros o especies. Algunos años des-

pués Castillo (1965; 1968) incluye 36 especies

conocidas y nuevas de Chile continental e insu-

lar, excepto Isla de Pascua. La fauna de I. de Pas-

cua agrega cuatro especies más de ofiuroídeos

(Castilla y Robaczylo, 1987; DiSalvo et al.,

1988).

Castillo (1967) hizo un resumen de la fauna

antártica citada para el área de las Islas Shetland

del Sur y Península Antártica, mencionando 43

especies, de las cuales revisó 11. En un trabajo

un par de años posterior Fell et al. (1969) llegan

virtualmente a los mismos números, agregando a

las 13 especies de la Expedición Lund unas 45

especies antárticas distribuidas entre los 45% y 909

La distribución de los ofiuroídeos de Chile

continental tiene un patrón similar al de los aste-

roídeos. Unas diez especies son endémicas de la

provincia Peruano-Chilena, otras tantas se distri-

buyen desde la zona de transición al sur, y las

restantes, excepto una especie cosmopolita y dos

endémicas de la zona de los canales, se distribu-

yen en la Provincia Magallánica (Castillo, 1967;

Fell et al., 1969). Una nueva especie endémica

ha sido descrita más recientemente de la fosa

Chile-Perú (Tommassi, 1976). En publicaciones

sobre fauna arquibentónica del talud de la zona

central (Codoceo y Andrade 1978; Andrade

1987; Andrade et al., 1980) se registran siete es-

pecies, tres de las cuales extienden significativa-

mente sus rangos desde las regiones antártica O

subantártica hacia latitudes menores.

La lista siguiente contiene las 89 especies de

ofiuroídeos chilenos, clasificados de acuerdo a

Spencer y Wright (1966) y Fell (1982). Se han

compilado de la literatura más reciente disponi-

ble, y en los casos de dudas se han consultado las

fuentes originales, principalmente las últimas ex-

pediciones ya referidas (1.e. Mortensen, 1936).

Incluye tanto fauna costera somera y profunda de

Chile continental (Provincia Peruano-Chilena).

como subantártica (Región Magallánica) y de la

Región Antártica entre los 45% y 90% W. Por no

ser producto de una revisión taxonómica termina-

da, puede aún contener errores de identificación

y sinonimias (señaladas entre paréntesis cuando

hay alguna evidencia).

Los números en paréntesis indican la refe-

rencia bibliográfica al final de la lista de especies

(ver también Literatura citada).

LISTA SINOPTICA Y CLASIFICACION DE OFIUROIDEOS

REGISTRADOS PARA CHILE.

SUBCLASE OPHIUROIDEA GRAY, 1840

ORDEN PHRYNOPHIURIDA MATSUMOTO,

1915

SUBORDEN OPHIOMYXINA FELL, 1962

Familia Ophiomyxidae Ljungman, 1866

Subfamilia Ophiomyxinae Ljungman, 1866

Ophiomyxa vivipara Studer 1876 (1,2,6)

SUBORDEN EURYALINA LAMARCK, 1816

Familia Asteroschematidae Verrill, 1899

Asteroschema rubrum Lyman, 1879 (2,5)

Ophiocreas carnosus Lyman, 1879 (2)

Familia Gorgonocephalidae Ljungman, 1867

Gorgonocephalus chilensis (Philippi: 1858)

(1.2350)

Gorgonocephalus pourtalesi Lyman. 1875 (3,6)

Astrochlamys bruneus Koehler, 1912 (6,7)

Astrochlamys sol Mortensen, 1936 (6,7)

Astrotoma agassizi Lyman, 1875 (1,2,5,6)

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Astrohamma tuberculata (Koehler, 1923) (6)

ORDEN OPHIURIDA MULLER Y TROS-

CHEL, 1840

Familia Ophiuridae Lyman, 1865

Subfamilia Ophiurinae Lyman, 1865

Ophiura ambigua (Lyman, 1878) (6)

Ophiura crassa Mortensen, 1936 (6,7)

Ophiura frigida Koehler, 1901 (7)

Ophiura rouchi (Koehler, 1912) (7)

Ophiura serrata Mortensen, 1936 (6,7)

Amphiophiura abcisa (Lutken y Mortensen,

1899) (8)

Amphiophiura gibbosa Mortensen, 1936 (7)

Amphiophiura vemae Kyte, 1987 (8)

Ophiocten amitinum Lyman 1878 (6)

Ophiocten dubium Koehler, 1901 (6,7)

Ophiocten megaloplax Koehler, 1901 (6,7)

Ophiogona dóderleini (Koehler, 1901) (6,7)

Ophiogona tenella (err?) (6)

Ophiomastus australis (Koehler, 1901) (7)

Ophiomastus conveniens Koehler, 1923 (7,6)

Ophiomastus ludwigi Koehler, 1901 (6,7)

Ophiomastus molinae Castillo, 1968 (2,5)

Ophiomastus tuberculata Tommasi, 1976 (4)

Ophionotus victoriae Bell, 1902 (3,5,6,7)

Ophionotus hexactis (Smith, 1876) (err?) (3,6)

Ophiuroglypha lymani (Ljungman, 1870)

(IEZASAO)

Ophiuroglypha carinifera (Koehler, 1901) (6,7)

Ophiurolepis brevirrima Mortensen, 1936 (6,7)

Ophiurolepis gelida (Koehler, 1901) (6,7)

Ophiurolepis martensi (Studer, 1885) (6)

Ophiurolepis tuberosa (Mortensen, 1936) (6,7)

Theodoria frigida (Koehler, 1901) (6)

Theodoria partita (Koehler, 1908) (3,6,7)

Theodoria wallini (Mortensen, 1925) (3,6,7)

Subfamilia Ophiolepidinae Ljungman, 1867

Ophioceres incipiens Koehler, 1922 (6,7)

Ophiomusium biporicum Castillo, 1968 (2,5)

Ophiomusium lymani Thomson, 1873 (6)

Ophiosphalma glabrum (Lutken y Mortensen,

1899) (8)

Familia Ophioleucidae Matsumoto, 1915

Ophioperla koehleri (Bell, 1908) (6,7)

Ophipyren regularis Koehler, 1901 (6,7)

Familia Ophiodermatidae Ljungman, 1867

Toporkovia antarctica Djakonov, 1954 (6,7)

SUBORDEN LAEMOPHIURINA MATSU-

MOTO, 1915

Familia Ophiacantidae Perrier, 1891

Ophiacantha antarctica Koehler, 1901 (3,5,6)

Ophiacantha cosmica Lyman, 1878 (2,8)

Ophiacantha deruens Koehler, 1907 (2)

Ophiacantha frigida Koehler, 1909 (2)

Ophiacantha iquiquensis Castillo, 1968 (2)

Ophiacantha marsupialis Lyman, 1875 (2)

Ophiacantha pentactis Mortensen, 1936 (6,7)

Ophiacantha rosea Lyman, 1878 (2,6)

Ophiacantha setosa Lyman 1878 (2,10)

Ophiacantha vivipara Ljungman, 1870 (2,6)

Ophiocamax gigas Koehler, 1900 (6,7)

Ophiolebes vestitus Lyman 1878 (2,6)

Ophiomitrella araucana Castillo, 1968 (2,3)

Ophiomitrella chilensis Mortensen, 1952 (1,2)

Ophiomitrella falklandica Mortensen, 1936

(6,7)

SUBORDEN GNATHOPHIURINA MATSU-

MOTO, 1915

Familia Amphilepididae Matsumoto, 1915

Amphilepis patens Lyman, 1879 (8)

Familia Ophiactidae Matsumoto, 1915

Ophiactis asperula (Philippi, 1858) (1,2,6)

Ophiactis króyeri Lútken, 1861 (1,2,8)

Familia Amphiuridae Ljungman, 1867

Amphiura anomala Lyman, 1875 (2)

Amphiura belgicae Koehler, 1901 (3,6)

Amphiura benthica Castillo, 1968 (2)

Amphiura caparti Cherbomnier, 1962 (7)

Amphiura eugeniae Ljungman, 1867 (1,2)

Amphiura princeps Koehler, 1907 (2,6)

. Amphiura protecta Hertz, 1927 (7)

Amphiodia affinis (Studer, 1885) (6,7)

Amphiodia chilensis (Miller y Troschel, 1843)

(1,2)

Amphioplus acutus Mortensen, 1936 (6,7)

Amphioplus magellanica (Mortensen, 1936) (2)

Amphioplus peregrinator Koehler, 1912 (6,7)

Amphioplus textilis (Koehler, 1907) (2)

Amphipholis laevidisca H.L. Clark, 1909 (2)

Amphipholis squamata (Delle Chiaje, 1829)

(1,2,8)

Hemilepis joubini (Koehler, 1912) (3,6)

Hemilepis polita (Koehler, 1901) (3,6)

Icalia deficiens (Koehler, 1922) (6,7)

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

Icalia tomentosa (Lyman, 1879) (3,6)

Monamphiura calbuca (Mortensen, 1952) (1,2)

Monamphiura magellanica (Ljungman, 1866)

(1,2,6)

Monamphiura reloncavil (Mortensen, 1952)

(1,2)

Monamphiura microplax disjuncta Mortensen,

1936 (7)

Ophiophragmus chilensis (Miller y Troschel,

1843) (2)

Pandelia angularis (Lyman, 1879) (6)

Familia Ophiotricidae Ljungman, 1866

Ophiothrix spiculata Leconte, 1851 (2)

(1) = Mortensen, 1952

(2) = Castillo, 1965 y 1968

(3) = Larrain, en preparación

(4) = Tommasi, 1976

(5) = Andrade, 1987

(6) = Fell et al., 1969

(7) = Castillo, 1967

(8) = Maluf, 1988

RECURSOS HUMANQS Y LOGISTICOS

La Subclase Ophiuroidea ha sido tratada en

Chile sólo a través de los trabajos de Castillo (op.

cif.),. que cubren una parte de la fauna conocida.

En la actualidad no existen proyectos biosistemá-

ticos en marcha que incluyan a este grupo ani-

mal, excepto el ya referido (Larrain, en

preparación). No existen tampoco en el país otros

especialistas activos con experiencia taxonómica,

literatura especializada ni interés ecológico o bio-

lógico en el grupo. Entre los especialistas extran-

jeros con conocimientos sobre la fauna chilena

de ofiuroídeos se cuenta el Dr. Gordon Hendler,

del Museo de Historia Natural del Condado de

Los Angeles, en Estados Unidos, y el Dr. Víctor

Alva, del Instituto de Ciencias del Mar de Barce-

lona, España.

Las colecciones disponibles con valor bio-

sistemático están constituídas por 49 lotes sin

identificar en la Sala de Sistemática, Facultad de

Ciencias Biológicas, Universidad Católica de

Chile (SSUC) y por 15 especies con un total de

182 especímenes en la Colección del Museo de

Zoología de la Universidad de Concepción

(UCCC).

ASPECTOS BIOLOGICOS, ECOLOGICOS Y ESTADO DE

CONSERVACION.

No existe información sobre aspectos de la

biología o ecología de los ofiuroídeos de Chile.

No presentan aparentemente dificultades respecto

a su estado de conservación. Sin embargo, es ne-

cesario mejorar el conocimiento sobre distribu-

ción de las especies, con el objeto de detectar

posibles especies endémicas de distribución muy

restringida que podrían ser afectadas por efectos

antrópicos sobre los fondos en que generalmente

habitan o en los cuales reclutan.

SUBPHYLUM ECHINOZOA

CLASE ECHINOIDEA o "Erizos de mar"

La Clase comprende unas 6.000 especies, de

las cuales algo más de mil son recientes y las res-

tantes son fósiles. Estan agrupadas en dos Sub-

clases, la primera con un orden y la segunda con

cinco superórdenes, todos los cuales estan repre-

sentados en Chile.

_Los equinoídeos en general son bien conoci-

dos, principalmente a través de la monografía de

Mortensen (1928-1951), un trabajo de alcance

mundial. Las primeras referencias a erizos de

mar chilenos se encuentran, como ya se ha dicho,

en el viaje de Feuillée (1714) y en el "Saggio" de

Molina (1782). Durante el siglo diecinueve son

importantes los numerosos trabajos de Philippi

(1845-1898), los resultados de las expediciones

del "Challenger" (A. Agassiz, 1881) y varias

otras (ver Introducción). Entre las más recientes

se cuentan los resultados de la Expedición de la

Universidad de Lund, en cuyo informe Morten-

sen (1952) cita 5 especies y el trabajo de Pawson

sobre el material de la Expedición de la Royal

Society (1966), que sólo trata tres especies chile-

nas. Una monografía de los equinoídeos argenti-

nos (Bernasconi, 1953) cita varias especies

también presentes en Chile.

El primer trabajo monográfico sobre equi-

noídeos chilenos (Larrain, 1975) contiene una

historia abreviada de la investigación equinológi-

ca chilena y trata 15 especies de erizos regulares

de aguas someras del Superorden Echinacea, in-

cluyendo fósiles y recientes. Entre estos últimos,

dos están restringidas a la Provincia Peruano-

Chilena, una tiene una dilatada distribución lati-

tudinal desde Ecuador hasta el Estrecho de

Magallanes y las restantes tienen distribuciones

magallánicas o circumpoláres.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

En varios trabajos sobre las especies de islas

del Pacífico sudoriental (Deichmamn et al., 1924;

Allison et al., 1967; Codoceo, 1974; Codoceo,

1976) resumidos por Castilla y Robaczylo (1987)

y Robaczylo y Castilla (1987), se mencionan

unas quince especies más, distribuidas entre islas,

islotes y guyots. La fauna de profundidad del Pa-

cífico sudoriental es poco conocida, pero parece

seguir la tendencia de los otros grupos de equino-

dermos, de estar constituida en parte por especies

subantárticas y antárticas someras (Andrade,

Más recientemente Larrain (1984) ha hecho

una revisión de los erizos irregulares, en que es-

tudia cuatro órdenes con 30 especies de aguas so-

meras de Chile continental y la Península

Antártica y aguas adyacentes. Un trabajo que se

desarrolla actualmente (Larrain, en preparación)

incluye las especies de equinoídeos antárticos y

subantárticos colectados en las expediciones pos-

teriores a 1960. En total, la fauna subantártica y

antártica (Subregión de Scotia y Subregión An-

tartica Continental) incluye 7 especies de la Pro-

vincia Magallánica (que no llegan a Antártica), 3

especies que llegan a Antártica pero de origen

no-antártico, 10 especies subantárticas de géne-

ros primariamente antárticos, 3 especies antárti-

cas que llegan a la Provincia Magallánica, 9

especies antárticas que se extienden hasta el Arco

de Scotia, y más de veinte especies endémicas de

la Región Antártica, de probable distribución cir-

cumpolar. De éstas, unas 20 especies quedan

dentro del territorio nacional y la Antártica Chi-

lena entre los 45% y 90? W.

La lista siguiente contiene las 18 especies de

equinoídeos chilenos fósiles conocidos (marca-

dos + ) y las 64 especies recientes citadas para

Chile, incluidas las Regiones Subantártica y An-

tártica entre los 45* y 90% W. La información que

respalda algunos nuevos nombres o combinacio-

nes está contenida in extenso en una revisión ac-

tualmente en curso (Larrain, en preparación). Se

han omitido nombres de especies que serán sino-

nimizadas como resultado de ese estudio. La cla-

sificación sigue en gran parte a Mortensen

(1928-1951) y las diversas secciones del "Treati-

se" (Moore ed., 1966). Los números en parénte-

sis indican la referencia bibliográfica al final de

la lista de especies (ver también Literatura cita-

da).

LISTA SINOPTICA Y CLASIFICACION DE EQUINOIDEOS

REGISTRADOS PARA CHILE.

SUBPHYLUM ECHINOZOA HAECKEL, 1895

CLASE ECHINOIDEA LESKE, 1778

SUBCLASE PERISCHOECHINOIDEA

M'COY, 1849

ORDEN CIDAROIDA CLAUS, 1880

Familia Cidaridae Gray, 1825

Subfamilia Ctenocidarinae Mortensen, 1928

Ctenocidaris speciosa Mortensen, 1910 (6)

Ctenocidaris perrieri Koehler, 1912 (6)

Ctenocidaris spinosa (Koehler, 1926) (6)

Aporocidaris milleri (A. Agassiz, 1898) (6)

Aporocidaris sp. (6)

Austrocidaris canaliculata (A. Agassiz, 1863)

(6)

Austrocidaris spinulosa Mortensen, 1910 (6)

Austrocidaris lorioli (Mortensen, 1903) (5)

Homalocidaris geliberti (Koehler, 1912) (6)

Homalocidaris gigantea (H.L. Clark, 1925) (6)

Notocidaris mortenseni (Koehler, 1900) (6)

Notocidaris gaussensis Mortensen, 1909 (6)

Notocidaris platyacantha (H.L. Clark, 1925)

(6)

Notocidaris hastata Mortensen, 1909 (6)

Rhynchocidaris triplopora Mortensen, 1909 (6)

Subfamilia Rhabdocidarinae Lambert, 1900

Phyllacanthus imperialis (Lamarck, 1816) (3)

Cidaroida incertae sedis:

(+)Cidarites antarctica (Ortmann, 1900) (5)

(+)Cidarites curaumae Philippi, 1887 (5)

(+)Cidarites ovata Philippi, 1887 (5)

(+)Cidarites burckhardti Larrain, 1975 (5)

SUBCLASE EUECHINOIDEA BRONN, 1860

SUPERORDEN DIADEMATACEA DUNCAN,

1889

ORDEN ECHINOTHURIOIDA CLAUS, 1880

Familia Echinothuriidae Thomson, 1872

Subfamilia Echinothuriinae Thomson, 1872

Hygrosoma sp. (12)

Hygrosoma hoplacantha (?) (Thomson, 1877)

(6)

Subfamilia Kamptosomatinae Mortensen, 1934

Kamptosoma asterias (A. Agassiz, 1881) (6)

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

ORDEN DIADEMATOIDA DUNCAN, 1889

Familia Diadematidae Gray, 1855

Diadema paucispinum A. Agassiz, 1863 (4)

Diadema savigny (Audouin, 1826) (14)

Centrostephanus rodgersii (A. Agassiz, 1863)

(2)

Centrostephanus sylviae Fell, 1975 (1)

Familia Lissodiadematidae Fell, 1966

Lissodiadema lorioli Mortensen, 1903 (3)

Familia Aspidodiadematidae Duncan, 1889

Plesiodiadema microtuberculatum (A. Agassiz,

1879) (6)

SUPERORDEN ECHINACEA CLAUS, 1876

ORDEN PHYMOSOMATOIDA MORTEN-

SEN, 1904

Familia Phymosomatidae Pomel, 1883

(+)Phymosoma mollense (Paulcke, 1903) (5)

Familia Stomechinidae Pomel, 1883

(+)Psephechinus diademoides (Bayle y Co-

quand, 1851) (5)

ORDEN ARBACIOIDA GREGORY, 1900

Familia Arbaciidae Gray, 1855

Arbacia spatuligera (Valenciennes, 1846) (5)

Arbacia dufresnei (Blainville, 1825) (5)

Tetrapygus niger (Molina, 1782) (5)

ORDEN TEMNOPLEUROIDA MORTENSEN,

1942

Familia Temnopleuridae A. Agassiz, 1872

Pseudechinus magellanicus (Philippi, 1857) (5)

Familia Toxopneustidae Troschel, 1872

Cyrtechinus verruculatus (Liitken, 1864) (3)

Tripneustes gratilla (Linnaeus, 1758) (6,14)

ORDEN ECHINOIDA CLAUS, 1876

Familia Echinidae Gray, 1825

Dermechinus horridus (A. Agassiz, 1879) (5)

Loxechinus albus (Molina, 1782) (5)

Sterechinus bernasconiae Larrain, 1975 (5)

Sterechinus antarcticus Koehler, 1901 (15)

Sterechinus neumayeri (Meissner, 1900) (15)

Sterechinus agassizi Mortensen, 1910 (15)

Familia Echinometridae Gray, 1825

Echinometra insularis H.L. Clark, 1912 (6,14)

Echinostrephus molaris (Blainville, 1825) (?)

(14)

Echinostrephus aciculatus A. Agassiz, 1863 (3)

SUPERORDEN GNATHOSTOMATA ZITTEL,

1879

ORDEN HOLECTYPOIDA DUNCAN, 1889

SUBORDEN ECHINONEINA H.L. CLARK,

1925

Familia Echinoneidae Agassiz and Desor, 1847

Echinoneus cyclostomus Leske, 1778 (6,11)

ORDEN CLYPEASTEROIDEA A.AGASSIZ,

1872

SUBORDEN CLYPEASTERINA A.AGASSIZ,

1872

Familia Clypeasteridae L. Agassiz, 1835

Clypeaster isolatus Serafy 1971 (6)

Clypeaster reticulatus (Linnaeus, 1758) (11)

SUBORDEN LAGANINA MORTENSEN, 1948

Familia Laganidae A. Agassiz, 1873

(+)Jacksonaster chilensis Lambert y Thiery

1914 (6)

SUBORDEN SCUTELLINA HAECKEL, 1896

Familia Monophorasteridae Lahille, 1896

+)Monophoraster darwini (Desor, 1847) (6)

(+lheringiella patagonensis (Desor,1847) (6)

Familia Mellitidae Stefanini, 1911

(+)Encope calderensis Gigoux, 1916 (6)

(+)Encope (Echinadesma) chilensis Philippi,

1887 (6)

SUPERORDEN ATELOSTOMATA ZITTEL,

1879

ORDEN CASSIDULOIDA CLAUS, 1880

Familia Clypeidae Lambert, 1898

Gayana Zool. 59(1), 1995.

(+)Pygurus (Pygurus) andinus Larrain y Biró,

1985 (7)

Familia Faujasiidae Lambert, 1905

(+)5tygmatopygus andersoni (Lambert, 1910)

(13)

ORDEN HOLASTEROIDA DURHAM Y MEL-

VILLE, 1957

Familia Urechinidae Duncan, 1889

Urechinus naresianus A. Agassiz, 1879 (6)

Urechinus wyvilli (A. Agassiz, 1879) (6)

Familia Pourtalesiidae A. Agassiz, 1881

Pourtalesia hispida A. Agassiz, 1879 (6)

ORDEN SPATANGOIDA CLAUS, 1876

SUBORDEN HEMIASTERINA FISCHER,

1966

Familia Hemiasteridae Clark, 1917

(+)Hemiaster wayensis Larrain, 1985 (8)

(+)Hemiaster? chilensis (Philippi, 1860) (6)

Hemiaster tenuis (A. Agassiz, 1898) (6)

Familia Schizasteridae Lambert, 1905

(+)Schizaster valdivianus (Philippi, 1887) (6)

(+)Schizaster (Paraster) atacamensis (Philippi,

1887) (6)

(+)Abatus kieri McKinney, McNamara y Wied-

man, 1988 (13)

Abatus agassizi, Mortensen, 1910 (6)

Abatus cavernosus (Philippi, 1845) (6)

Abatus curvidens Mortensen, 1936 (6)

Abatus shackletoni Koehler, 1911 (6)

Amphipneustes lorioli Koehler, 1900 (6)

Amphipneustes similis Mortensen, 1936 (6)

Brachysternaster chesheri Larrain, 1985 (9)

Brisaster moseleyi (A.Agassiz, 1881) (6)

Tripylaster philippii (Gray, 1851). (6)

Tripylus abatoides (Clark, 1925) (6)

Tripylus beatriceae Larrain, 1985 (10)

Tripylus cordatus (Koehler, 1912) (6)

Tripylus excavatus (Philippi, 1845) (6)

SUBORDEN MICRASTERINA FISCHER,

1966

Familia Brissidae Gray, 1855

Brissus latecarinatus (Leske, 1778) (6)

Brissus (Allobrissus) agassizi Dóderlein 1885

(6,11)

Brissopsis sp.(6,12)

Familia Spatangidae Gray, 1825

Nacospatangus gracilis A. Agassiz, 1873 (6)

SUBORDEN ASTEROSTOMATINA FIS-

CHER, 1966

Familia Asterostomatidae Pictet, 1857

Scrippsechinus fisheri Allison, Durham «

Mintz, 1967 (2)

(1) = Fell, 1975

(2) = Codoceo, 1976

(3) = Disalvo et al., 1988

(4) = Codoceo, 1974

(5) = Larrain, 1975

(6) = Larrain, 1984 y en preparación

(7) = Larrain y Biró-Bagóczky, 1985

(8) = Larrain, 1985a

(9) = Larrain, 1985b

(10)= Larrain, 1985c

(11)= Castilla y Robaczylo, 1987

(12)= Andrade, 1987

(13)= McKinney et al., 1988

(14)= Fell, 1974

(15)= Pawson, 1969

RECURSOS HUMANOS Y LOGISTICOS

La biosistemática de los equinoídeos chile-

nos está siendo estudiada desde la década del se-

tenta por el autor, en el Laboratorio de

Equinodermos del Departamento de Zoología de

la Universidad de Concepción. La ausencia de re-

cursos para la investigación en taxonomía, tradi-

cional en la política de instituciones públicas y

privadas de apoyo a la investigación científica en

nuestro país, ha prevenido la mayor formación de

recursos humanos en la disciplina. Hasta ahora el

trabajo de reconocimiento de la fauna se ha he-

cho generalmente mediante financiamiento uni-

versitario nacional y extranjero, de proyectos

ecológico-bentónicos antárticos, de geología y

paleontología relacionados a intereses explorato-

rios, o con el financiamiento de instituciones in-

ternacionales (UNESCO, OEA, DAAD, SIGMA

XD.

No existen otros especialistas en el país que

publiquen en taxonomía del grupo, aun cuando

éste es frecuentemente mencionado en trabajos

generales y algunas de las especies de erizos re-

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

gulares son foco permanente de interés ecológico

de algunos autores nacionales. Las mayores co-

lecciones disponibles con valor biosistemático

están constituidas por 91 lotes no completamente

identificados en la Sala de Sistemática de la Fa-

cultad de Ciencias Biológicas de la Universidad

Católica de Chile (SSUC) y por 56 especies con

un total de 2.768 especímenes en la Colección

del Museo de Zoología de la Universidad de

Concepción (UCCC).

ASPECTOS BIOLOGICOS, ECOLOGICOS Y ESTADO DE

CONSERVACION

Las especies litorales de Chile continental

son sin duda las mejor conocidas. De éstas se co-

nocen aspectos importantes de la biología repro-

ductiva de Tetrapygus niger, una especie

intensamente utilizada como animal de experi-

mentación y de Arbacia spatuligera, otro arbáci-

do menos conocido pero abundante en el

sublitoral somero de la zona central (Bay-Sch-

mith, 1981). T. niger es frecuentemente recolec-

tado con fines científicos, sin embargo sus

poblaciones son extensas y no parecen sufrir alte-

raciones por esta causa. Las especies restantes

son muy poco conocidas y son difícilmente acce-

sibles al público en general, por lo que en la ac-

tualidad no preocupa su estado de conservación,

aun cuando son válidas las consideraciones que

se han hecho anteriormente con respecto a las es-

pecies litorales de asterozoos.

Mención aparte merece Loxechinus albus, el

erizo comestible, que representa un recurso pes-

quero importante. Es un organismo bentónico

que se extiende desde el litoral hasta 340 m de

profundidad, se alimenta de macroalgas en su es-

tado adulto y se distribuye a lo largo de la costa

chilena en toda su extensión. A nivel mundial es-

ta sola especie representa el 20% de los desem-

barques totales de erizos (Bustos ef al., 1991).

Las otras especies explotadas comercialmente en

el mundo corresponden principalmente a los gé-

neros Echinus y Strongylocentrotus, en el hemis-

ferio norte.

La primera legislación que reguló esta pes-

quería es el Decreto 1584 de 1934, que fijó una

talla mínima de extracción. Sin embargo, las es-

tadísticas pesqueras se hacen significativas desde

aproximadamente 1954. A partir de 1965 y hasta

1975 se verifica una presión de pesca que oscila

entre algo menos de 2.000 hasta un máximo de

4.000 toneladas/año, desembarcadas principal-

mente en la zona norte y central del país. Castilla

y Becerra (1975) interpretaron estas oscilaciones

(con descensos marcados en 1970 y 1974), como

producto de una presión de pesca mayor que la

captura máxima de equilibrio. Como se aprecia

en la Figura 1, a partir de 1976 se incrementaron

FIGURA 1

DESEMBARQUE TOTAL ERIZO COMESTIBLE

1965 — 1991

Miles de Toneladas

65666768 697071 7273747576777879808182838485868788899091

HE Loxechinus albus

Fuentes: CORFO, 1982; Sernap, 1991

Gayana Zool. 59(1), 1995.

notablemente los desembarques, llegando a apro-

ximadamente 15.000 toneladas en 1981, prove-

nientes principalmente de la X y XI Regiones. En

ese mismo año se introdujeron modificaciones a

las regulaciones anteriores a través del Decreto

382, estableciéndose una veda entre el 1 de no-

viembre y el 15 de enero de cada año (excepto la

XII Región), y una talla mínima de extracción de

8 cm. En 1982 fue modificada la talla mínima a 7

cm, por medio del Decreto 116. En 1985, debido

a la drástica disminución de la especie en el norte

ción o sobreexplotados y la pesquería se ha des-

plazado hacia el extremo sur del país (Bustos ef

al., 1991). Esto queda claramente ejemplificado

por el hecho que, de las 21.382 toneladas desem-

barcadas en 1991 (Figura 2), solamente un 5%

corresponde a las tres primeras Regiones. El res-

to es aportado en muy pequeña parte por las Re-

giones IV a la VI (2.7%) y principalmente por

los desembarques de X (78.7%) y la XI (11.8%)

Regiones. Menos importante es el aporte de la

XII Región (1.7%).

FIGURA 2

DESEMBARQUE ERIZO POR REGION

1991

Miles de toneladas

Fuente: Serncp, 1992

del país, se estableció una veda total entre enero

de 1985 y enero de 1987 para las Regiones I a HI

por medio del Decreto 336. En 1987, por medio

del Decreto 291, se estableció la normativa que

aún rige, y que en lo principal establece veda es-

tacional entre el 15 de octubre y el 15 de enero

de cada año, entre la I y XI Regiones.

A la fecha, estas medidas no han sido todo

lo exitosas que se esperaba y no han permitido

que las poblaciones se recuperen. Como resulta-

do de esta situación, la mayoría de los bancos de

erizos se encuentran en niveles altos de explota-

vil vil! IX X X1 X1!

0 Loxechinus albus

Un esfuerzo interesante para permitir la re-

población por medios artificiales ha sido realiza-

do recientemente a través de un proyecto

IFOP-PNUD (Bustos ef al.1991). La aplicación

de estos resultados debería permitir disminuir la

presión sobre la especie, especialmente en la X

Región, a través de técnicas de cultivo, control de

reclutamiento, sobrevivencia, crecimiento y el

manejo de las poblaciones, facilitando una explo-

tación racional.

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

CLASE HOLOTHUROIDEA

o "Pepinos de mar"

La Clase tiene seis órdenes, 25 familias y

unas 1.200 especies (Pawson, 1982b). Hay repre-

sentantes de los seis órdenes en nuestras costas.

Pawson (1969a) estudió las holoturias chilenas

de la Expedición Lund y otras colecciones, reco-

nociendo un total de 27 especies, concluyendo

que la fauna de holoturias chilenas era muy bien

conocida. El mismo autor (Pawson, 1969b) men-

ciona 60 especies al sur del paralelo 35% S. De és-

tas, 31 se encuentran en Chile austral (Provincia

Magallánica) en las regiones Subantártica (exclu-

yendo el Atlántico) y Antártica, entre los 45” y

90 W. Algunos años después, Urbina (1981), en

una sinopsis de los holoturoídeos chilenos, men-

ciona 46 especies litorales y de profundidad de

Chile continental e insular, incluyendo algunas

especies antárticas. DiSalvo (1988) menciona

diez especies para Isla de Pascua (una anunciada

como especie nueva para ser descrita) y Ro-

baczylo y Castilla (1987) otras tres para la Isla de

J. Fernández. Belyaev (1971) y Andrade (1987)

registran cada uno dos especies de profundidad

- de Chile Central. Maluf (1988) menciona en total

22 especies del Pacífico Central Oriental que se

extienden hasta Chile, de las cuales 9 llegan has-

ta la Región Magallánica.

La lista siguiente contiene las 74 especies

nominales de holoturias conocidas en Chile, in-

cluyendo la Región Antártica, especialmente la

Subregión de Scotia y la Subregión Antartica

Continental (Hedgpeth, 1969) entre los 45* y 90%

W. Esta lista se ha compilado de la literatura más

reciente disponible y revisando las fuentes origi-

nales (expediciones) en los casos dudosos. Sin

embargo, es evidente que una nueva revisión de

este grupo para Chile es necesaria (Larrain, en

preparación). Algunos de estos registros podrían

estar duplicados y corresponder a sinonimias, lo

que se ha indicado en algunos casos (entre parén-

tesis). La clasificación sigue a Pawson y Fell

(1965) y Pawson (1982b). Los números en parén-

tesis indican la referencia bibliográfica al final de

la lista de especies (ver también Literatura ci-

tada).

SINOPSIS Y CLASIFICACION DE ESPECIES DE HOLOTU-

ROIDEOS REGISTRADOS PARA CHILE

CLASE HOLOTHUROIDEA BLAINVILLE,

1834

SUBCLASE DENDROCHIROTACEA GRUBE,

1840

ORDEN DENDROCHIROTIDA GRUBE, 1840

Familia Psolidae Perrier, 1902

Psolus antarcticus (Philippi, 1857) (3,7)

Psolus koehleri Vaney, 1907 (7)

Psolus charcoti Vaney, 1907 (7)

Psolus patagonicus Ekman, 1925 (3,7)

Psolus squamatus (Koren, 1844) (1,3,5,7,8)

Neopsolidium convergens (Hérouard, 1901)

(557)

Psolidium dorsipes Ludwig, 1886 (1,3,7)

Psolidium disciformis (Théel, 1886) (3,7)

Psolidium gaini Vaney, 1914 (7)

Familia Phyllophoridae Oestergren, 1907

Subfamilia Thyoninae Panning, 1949

Pentamera chiloensis (Ludwig, 1887) (1,3,7)

Familia Cucumariidae Ludwig, 1894

Subfamilia Colochirinae Panning, 1949

Ocnus calcarea (Dendy, 1896) (3)

Trachythyone lechleri (Lampert, 1886) (3,7)

Trachythyone parva (Ludwig, 1874) (3,7)

Subfamilia Cucumariinae Panning, 1949

Cucumaria attenuata Vaney, 1906 (sinon?) (7)

Cucumaria chilensis Ludwig, 1875 (1,3)

Cucumaria georgiana Lampert, 1886 (7)

Cucumaria godeffroyi Semper, 1868 (3)

Abyssocucumis abyssorum (Théel, 1886) (1)

Ekmocucumis irregularis (err?) (7)

Ekmocucumis spatha (exr?) (7)

Ekmocucumis steineni (Ludwig, 1898) (7)

Ekmocucumis turqueti (Vaney, 1906) (7)

Cladodactyla crocea Lesson, 1830 (3,7)

Cladodactyla crocea croceoides Vaney. 1908

(3)

Hemioedema spectabilis (Ludwig, 1882) (3.7)

Pseudocnus dubiosus leoninus (Semper. 1868)

(37)

Pseudocnus perrieri (Ekman, 1927) (3.7)

Subfamilia Thyonidiinae Heding y Panning.

1954

Pattalus mollis Selenka, 1868 (1,3)

Athyonidium chilensis (Semper, 1868) (1.3)

Gayana Zool. 59(1), 1995.

ORDEN DACTYLOCHIROTIDA PAWSON Y

FELILE 1965

Familia Ypsilothuriidae Heding, 1942

Ypsilothuria bitentaculata (Ludwig, 1893) (1,3)

Staurocucumis liouvillei (Vaney, 1914) (7)

Ypsilocucumis scotiae (Vaney, 1906) (7)

Ypsilocucumis turricata (Vaney, 1906) (7)

SUBCLASE ASPIDOCHIROTACEA GRUBE,

1840

ORDEN ASPIDOCHIROTIDA GRUBE, 1840

Familia Holothuriidae Ludwig, 1894

Holothuria (Mertensiothuria) platei (Ludwig,

1898) (2,3)

Holothuria (Theelothuria) squamifera (Semper,

1868) (6)

Holothuria cinerascens (Brandt, 1835) (6)

Familia Synallactidae Ludwig 1894

Paelopatides confundens Théel, 1886 (1)

Pseudostichopus mollis Théel, 1886 (sinon?)

(1)

Familia Stichopodidae

Stichopus chloronotus Brandt, 1835 (6)

Stichopus mollis (Hutton, 1872) (8)

Microthele difficilis (Semper, 1868) (3,6)

Microthele nobilis (Selenka, 1867) (6)

ORDEN ELASIPODIDA THEEL, 1882

Familia Deimatidae Théel, 1882

Oneirophanta mutabilis Théel, 1882 (1,3)

Familia Laetmogonidae Ekman, 1925

Laetmogone wivillethomsoni Théel, 1879 (1,3)

Familia Elpidiidae Théel, 1882

Elpidia atakama Belyaev, 1971 (1)

Elpidia chilensis Belyaev, 1971 (1)

Elpidia verrucosa Théel, 1882 (3)

Amperima naresi (Théel, 1882) (1)

Parelpidia cylindrica Théel, 1882 (3)

Parelpidia elongata Théel, 1882 (3)

Peniagone vitrea Théel, 1882 (1,3)

Scotoplanes globosa Théel, 1879 (1,3)

Familia Psychropotidae Théel, 1882

Psychropotes longicauda Théel, 1882 (1,3)

Psychropotes depressa Théel, 1882 (1)

Benthodytes abyssicola Théel, 1882 (3)

Benthodytes mamillifera Théel, 1882 (3)

Benthodytes papillifera Théel, 1882 (3)

Benthodytes sanguinolenta Théel, 1882 (1,3)

Benthodytes sordida Théel, 1882 (3)

SUBCLASE APODACEA BRANDT, 1835

ORDEN APODIDA BRANDT, 1835

Familia Synaptidae Burmeister, 1837

Anapta fallax Lampert, 1889 (3)

Euapta godeffroyi (Semper, 1868) (6)

Polyplectana keffersteini (Selenka, 1867) (6)

Familia Chiridotidae Oestergren, 1898

Chiridota fernandensis Ludwig, 1898 (2,3)

Chiridota marenzelleri Perrier, 1904 (3)

Chiridota pisanii Ludwig, 1886 (3)

Chiridota rigida (Semper, 1868) (6)

¿Polycheira rufescens (Brandt, 1835)? (6)

Taeniogyrus contortus (Ludwig, 1874) (3,7)

Trochodota purpurea (Lesson, 1830) (3)

ORDEN MOLPADIIDA HAECKEL, 1896

Familia Molpadiidae Miller, 1850

Molpadia amorpha Clark, 1908 (3)

Molpadia antarctica (Théel, 1886) (3)

Molpadia musculus (Risso, 1826) (1,3)

Familia Caudinidae Heding, 1931

Paracaudina chilensis (Miller, 1850) (1,3)

Hedingia planapertura (Clark, 1907) (3)

(1) = Maluf, 1988

(2) = Codoceo, 1976

(3) = Urbina, 1981

(4) = Pawson, 1964

(5) = Andrade, 1987

(6) = Disalvo et al. 1988

(7) = Pawson, 1969c

(8) = Andrade, 1987

RECURSOS HUMANOS Y LOGISTICOS

Aun cuando las holoturias son en general

organismos más bien crípticos y por lo tanto po-

co conocidas popularmente, el número total de

especies citadas para Chile es llamativamente al-

Biodiversidad de equinodermos chilenos: estado actual del conocimiento y sinopsis biosistematica: LARRAIN P., A.

to. Sin embargo, no existe ningún tratado actuali-

zado sobre el grupo. Más aún, a diferencia de lo

que ocurre con los otros grupos de equinoder-

mos, cuya clasificación actual incluye macrofósi-

les y por lo tanto en ella se incluyen tanto

especies fósiles como recientes, los escleritos de

holoturias que se fosilizan constituyen microfósi-

les cuya clasificación paralela no está completa-

mente relacionada con la de la fauna reciente

conocida, lo que hace más complejo su trata-

miento biosistemático. Por esta razón, el volu-

men del "Treatise" (Moore ed., 1966) no

contiene un tratamiento sistemático completo del

grupo. Excepto por el autor, en cuyo Laboratorio

y biblioteca existe la literatura e infraestructura

necesarias, no existen en Chile especialistas co-

nocidos en el grupo. Entre los especialistas ex-

tranjeros que mejor conocen la fauna chilena

destaca el Dr. David L. Pawson, Curador de

Equinodermos del Museo Nacional de Estados

Unidos, Smithsonian Institution, Washington,

Des

Las colecciones disponibles en Chile con

valor biosistemático están constituidas por 52 lo-

tes sin identificar en la Sala de Sistemática, Fa-

cultad de Ciencias Biológicas, Universidad

Católica de Chile (SSUC) y por 6 especies con

un total de 95 especímenes en la Colección del

Museo de Zoología de la Universidad de Con-

cepción (MZUC).

ASPECTOS BIOLOGICOS, ECOLOGICOS Y ESTADO DE

CONSERVACION

Hay algunas Tesis de Grado no publicadas

sobre aspectos de la biología de algunas especies

(Salas, 1980; Caffi, 1981; Troncoso, 1983), pero

no existe otra información sobre la biología del

grupo en el país. Esto es especialmente lamenta-

ble para el caso de Athyonidium chilensis, un ani-

mal sedentario, que vive enterrado en el

intermareal y sublitoral arenoso-rocoso, con un

hábito alimentario suspensívoro y que está siendo

sometida a una fuerte presión de explotación a

partir de 1991. Solamente en la Octava Región,

la extracción acumulada anual hasta noviembre

de 1992 alcanza a 130 toneladas (Salas, in litt.),

destinadas principalmente a la exportación a paí-

ses asiáticos para consumo alimenticio como

"trepang" o "béche-de-mer". Algo semejante está

ocurriendo con Pattalus mollis en la zona norte

del país, de la cual en la Primera Región se han

desembarcado 4 toneladas entre enero y junio de

1992. No existiendo información sobre stocks ni

otros parámetros biológico-poblacionales de es-

tas especies es imposible predecir o proyectar lo

que ocurrirá con este nuevo recurso, el "pepino

de mar", pero es indudable que existe el peligro

de afectar las poblaciones más allá de lo que pue-

den soportar, especialmente tratándose de anima-

les inmóviles, agrupados, fácilmente accesibles

en el intermareal y sublitoral somero. Resulta ur-

gente establecer estudios que permitan sentar las

bases para un manejo racional de este organismo

y que prevenga lo ocurrido con el erizo comesti-

ble. Del mismo modo, para éstas y las restantes

especies sin interés comercial, son válidos los as-

pectos comentados respecto de las amenazas po-

tenciales a los otros grupos de equinodermos con

distribución litoral.

AGRADECIMIENTOS

El autor agradece a los Dres. John Lawrence

y Patricio Sánchez la revisión del manuscrito; sus

sugerencias enriquecieron significativamente el

mismo. Este último y el Dr. Pedro Báez (Museo

Nacional de Historia Natural) contribuyeron con

importante información sobre colecciones. La Sr-

ta. Elvira Solar, del Museo de Zoología de la

Universidad de Concepción, prestó una impor-

tante ayuda en la elaboración del manuscrito. Es-

te trabajo resume la experiencia de colaboración

con numerosos especialistas nacionales y extran-

jeros a lo largo de los últimos 25 años, incluyen-

do generosas invitaciones y patrocinio durante

varios períodos como investigador entre otros en

el U.S. National Museum, en Washington D.C.,

Estados Unidos (Dr. David Pawson), el Alfred

Wegener Instituut fur Polar und Meeres-Fors-

chung en Bremerhaven, Alemania (Dr. Wolf

Arntz), y el Zoologisk Museum en Copenhague,

Dinamarca (Dr. Margit Jensen). La elaboración

del manuscrito fue sugerida por el Comité Nacio-

nal de Biodiversidad (CONICYT) y financiado

en parte por el proyecto DIC 92.38.29-1, Univer-

-sidad de Concepción. A todos ellos, investigado-

res e instituciones, mis

agradecimientos.

profundos

Gayana Zool. 59(1), 1995.

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ISSN 0016-531X

THE AMERICAN GENERA OF ASILIDAE (DIPTERA): KEYS FOR

IDENTIFICATION WITH AN ATLAS OF FEMALE SPERMATHECAE AND

OTHER MORPHOLOGICAL DETAILS. IX.3. SUBFAMILY ASILINAE

LEACH -EICHOICHEMUS-GROUP, WITH THE PROPOSAL OF TWO

NEW GENERA AND A CATALOGUE OF THE NEOTROPICAL SPECIES'

LOS GENEROS AMERICANOS DE ASILIDAE (DIPTERA): CLAVES PARA SU

IDENTIFICACIÓN CON UN ATLAS DE LAS ESPERMATECAS DE LAS

HEMBRAS Y OTROS DETALLES MORFOLÓGICOS. IX.3. SUBFAMILIA

ASILINAE LEACH -GRUPO-EICHOICHEMUS, CON LA PROPOSICIÓN DE

DOS GENEROS NUEVOS Y UN CATALOGO DE LAS ESPECIES

NEOTROPICALES'

Jorge N. Artigas? 8 Nelson Papavero?

ABSTRACT

The Eichoichemus-group of Asilinae (Asilidae) inclu-

des 3 genera: Eichoichemus Bigot, 1857; Proctopho-

roides, gen. n. (type-species, Erax hyalipennis

- Macquart) and Wygodasilus, gen. n. (type-species,

Erax pulchripes Bromley). A key to those genera and

a catalogue of the neotropical species are given, as

well as illustrations of the male and female terminalia

and the spermathecae of Eichoichemus.

KeYwokrDs: America. Neotropic. Asilidae. Proctopho-

roides. Eichoichemus. Wygodasilus. Taxonomy. Cata-

logue.

INTRODUCTION

This is the part IX.3 of a serie of papers in-

tended as a preliminary effort to define the Ame-

rican genera of Asilidae, describing the new

genera, preparatory to the elaboration of a catalo-

gue of Neotropical species for inclusion in the

forthcoming World Catalogue of Flies, now

'This research was supported by the Fundacáo de Am-

paro a Pesquisa do Estado de Sáo Paulo (FAPESP,

Grants 85/1772-5, 86/2227-1, 87/3170-8 and 94/2344-

6).

“Universidad de Concepción, Facultad de Ciencias

Naturales y Oceanográficas, Departamento de Zoolo-

gía.

¿Museu de Zoologia, Universidade de Sáo Paulo. Pes-

quisador do Conselho Nacional de Desenvolvimento

Científico e Tecnológico (CNPq, Proc. n* 30.0994/79).

RESUMEN

El grupo-Eichoichemus de Asilinae (Asilidae) incluye

3 géneros: Eichoichemus Bigot, 1857; Proctophoroi-

des, gen. n. (especie-tipo, Erax hyalipennis Macquart)

y Wygodasilus, gen. n. (especie-tipo, Erax pulchripes

Bromley). Se presenta una clave para esos géneros y

un catálogo de las especies neotropicales, además de

ilustraciones de las terminalias del macho y de la hem-

bra y las espermatecas de Eichoichemus.

PALABRAS CLAVES: América. Neotrópico. Asilidae.

Proctophoroides. Eichoichemus. Wygodasilus. Taxo-

nomía. Catálogo.

being preparated by the U.S. Department of

Agriculture and U.S. National Museum of Natu-

ral History, Washington D.C.

Previous parts in this series were published

as follows:

Part I (Key to subfamilies, subfamily Lepto-

gastrinae): Gayana, Zool. 52(1-2): 95-114, 1988;

Part Il (Dasypogoninae): Gayana, Zool.

52(3-4): 199-260, 1988;

Part III (Trigonomiminae): Bol. Soc. Biol.

Concepción, 60: 35-41, 1989;

Part IV (Laphriinae, except Atomosiini):

Bolm. Mus. paraense E. Goeldi, Zool. 4(2): 211-

ZII O:

Part V (Stichopogoninae): Bol. Soc. Biol.

Concepción, 61: 39-47, 1990:

Part VI (Laphriinae, Astomosiini): Gayana,

Zool. 55(1): 53-87, 1991:

Part VI.1 (Stenopogoninae, key to tribes):

2!)

Gayana Zool. 59(1), 1993.

Gayana, Zool. 55(2): 139-144, 1991.

Part VIL2 (Stenopogoninae, Tribes Acrony-

chini, Bathypogonini and Ceraturgini): Gayana,

Zool. SI3): 247-235, 1991:

Part VIL.3 (Stenopogoninae, Tribes Dioctrii-

ni and Echthodopini): Gayana, Zool. 55(4): 261-

266, 1992;

Part VIL4 (Stenopogoninae, Tribe Enigmo-

morphini): Bol. Soc. Biol. Concepción 62: 27-53,

OLÉ

Part VILS (Stenopogoninae, Tribe Tillobro-

mini): Rev. chil. Ent. 19: 17-27, 1992;

Part VIL6 (Stenopogoninae, Tribes Phellini,

Plesiommatini, Stenopogonini and Willistonini-

ni): Gayana, Zool. 57(2): 309-321, 1994;

Part VIL7 (Stenopogoninae, Tribe Cyrtopo-

gonini): Bol. Soc. Biol. Concepción 62: 55-81,

1992:

Part VIII (Laphystiinae): Arquivos de Zoo-

logia, SáoPaulo.

Part IX.1 (Asilinae, key to generic group):

Arquivos de Zoologia, SáoPaulo.

Part IX.2 (Asilinae, Efferia-group): Arqui-

vos de Zoologia, SáoPaulo.

MATERIAL AND METHODS

The material used in this series belongs

mainly to the Museu de Zoologia da Universida-

de de Sáo Paulo, Brazil, and to the Departamento

de Zoologia, Universidad de Concepción, Chile.

The two species included in the new genus

Proctophoroides and the one included in the new

genus Wygodasilus, are only known from the ty-

pes. No figures are presented of these three spe-

cies.

The methodology employed in the dissec-

tion and preservation of the male terminalia, fe-

male spermathecae and other morphological

parts is the same employed by Artigas (1971).

LisT OF ABBREVIATIONS:

AMNH: American Museum of Natural History,

New York

BMNH: British Museum (Natural History), Lon-

don

FAUCV: Facultad de Agronomía, Universidad

Central de Venezuela

HT: Holotype

MNHNP: Muséum National d'Histoire Naturelle,

Paris

OXF: Hope Department of Entomology, Oxford

University, Oxford.

ST: Sintype

WIEN: Naturhistorisches Museum, Vienna

RESULTS

EICHOICHEMUS-GROUP

KEY TO AMERICAN GENERA:

1. Only two submarginal cells in the wing, 1.e.,

vein R4, near its junction with R5, only with a

stump vein that ends in cell r,,,. Claws obtuse

CM oros oaclosdadnocos Wygodasilus, gen. n.

Three submarginal cells present in the wing,

1.e., vein R, with a complete extra vein that uni-

tes 1t with vein R,_,. Claws acute or obtuse

2(1) Claws obtuse. Male Costa no dilated (South

'¡Amenica but noti Calo

IA eS Eichoichemus Bigot, 1857

Claws acute. Male Costa dilated (Brazil:

Mato Grosso, Minas Gerais, Sáo Paulo)...............

A ng ce 000 Proctophoroides, gen. n.

Genus Eichoichemus Bigot

(Figs. 1-8)

Eichoichemus Bigot, 1857: 543 (in key). Type-

species, Erax flavianalis Macquart (orig.

des.).

Proctophorus Schiner, 1866: 666 (key), 674

(diagnosis), 712 (list of species). Type-spe-

cies, Asilus pyrrhopygus Wiedemanmn (orig.

des.).

LIST OF SPECIES:

connexus (Wiedemamn), 1828: 497 (Asilus). Ty- -

pe-locality: Uruguay, Montevideo. ST-

:WIEN.

eraxoides (Curran), 1935: 10 (Promachina). Ty-

pe-locality: Brazil, Mato Grosso, Chapada

dos Guimaraes. HT: AMNH. n.comb.

American genera of Asilidae. IX. 3. Asilinae, Eichoichemus-group: ARTIGAS J. N. 8 N. PAPAVERO

flavianalis (Macquart), 1848: 186 (1848: 26), pl.

2, figs. 12-12a (not 13 as in text, p. 186; see

'Explanation des figures', p. 230) (Erax).

Type-locality: Brazil, Minas Gerais. HT:

OXF. (= ?connexus (Wiedemann)).

gavius (Walker), 1851: 151 (Asilus). Type-loca-

lity: 'Brazil'. HT: BMNH (?synonym of

pyrrhomystax (Wiedemamn); the type is a

female and therefore this species cannot be

correctly identified).

kalettai Ayala, 1978: 34, figs. 4-7. Type-locality:

Brazil, Santa Catarina, Nova Teutonia. HT:

FAUCV. (The male terminalia drawing 1s so

bad that it 1s impossible to identify correctly

this species).

lizbethae Ayala, 1978: 32, figs. 1-3. Type-loca-

lity: Venezuela, D.F., Depto. Vargas. HT:

FAUCV. (Apparently very close to conne-

xus (Wiedemann), but the very poor illustra-

tion of the male genitalia, as in the above

case, renders impossible the identification of

this species).

lycorius (Walker), 1851: 143 (Asilus). Type-loca-

lity: 'South America'. HT: BMNH. (As oc-

curs with gavius (Walker), this species may

be a synonym of pyrrhomystax (Wiede-

mann), but as the type is a female, we can-

not be sure of this synonymy).

melaleucus (Wiedemann), 1828: 498 (Asilus).

Type-locality: 'Brazil'. HT: WIEN.

neowillistoni (Bromley), 1933: 15 (Erax; nom.

nov. for willistoni Bromley). Type-locality:

Brazil, Mato Grosso, Chapada dos Guima-

ráes.

willistoni Bromley, 1928: 3 (Erax; preocc. Hi-

ne, 1919). Type-locality: Brazil, Mato Gros-

so, Chapada dos Guimaráes. HT: AMNH.

propinquus (Bromley), 1928: 5 (Erax). Type-lo-

cality: Brazil, Mato Grosso, Chapada dos

Guimaraes. HT: AMNH. n. comb.

pumilus (Macquart), 1850: 389 (1850: 85), pl. 8,

fig. 9 (Erax). Type-locality: 'South Ameri-

ca". HT: MNHNP (tip of abdomen missing;

the poor drawing of the male genitalia ma-

kes it difficult to identify this species with

certainty).

pyrrhomystax (Wiedemamn), 1828: 497 (Asilus).

Type-locality: 'Brazil'. ST: WIEN.

Genus Proctophoroides, gen. n.

Very similar to Eichoichemus Bigot, diffe-

ring by the acute claws and by having the male

wing with a dilated Costa.

Type-species, Erax hyalipennis Macquart.

LIST OF SPECIES:

hyalipennis (Macquart), 1838: 114 (1839: 230)

(Erax). Type-locality: Brazil, western Minas

Gerais. HT: MNHNP. n. comb.

latiforceps (Bromley), 1928: 3 (Erax). Type-lo-

cality: Brazil, Mato Grosso, Chapada do

Guimaraes. HT: AMNH. n. comb.

As far as we know, both these species are

only known from the types.

The name of the genus refers to the genus

Proctophorus Schiner, junior synonym of its clo-

se genus Eichoichemus Bigot.

Genus Wygodasilus, gen. n.

Close to Eichoichemus Bigot, differing in

the possession of only two submarginal cells on

the wing. It differs from Proctophoroides, gen.

n., by that same character and by having obtuse

claws.

Type-species, Erax pulchripes Bromley.

As in the above case, to our knowledge this

genus and species are only known from the type

in the AMNH.

The generic name represents a homage to

the late Dr. Pedro Wigodzinsky.

SPECIES:

pulchripes (Bromley), 1928: 4 (Erax). Type-lo-

cality: Bolivia, Piedra Blanca (4 mi. w. of

Corumbá, Mato Grosso do Sul, Brazil). HT:

AMNH. n. comb.

Gayana Zool. 59(1), 1995.

REFERENCES

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spermatheca y funda del pene de los asílidos y su

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(3): 121-323, 14 pls., 1839 ).

MACQUART, J., 1848. Dipteres exotiques nouveaux ou

peu connus. Suite du 2e. supplément (1.e., 3e.

supplément). Mém. Soc. r. Sci. Agr. Arts Lille

1847 (2): 161-237, 7 pls. (Also sep. publ., pp. 1-

77,7 pls., Paris, 1848 ).

MACQUART, J., 1850. Diptéres exotiques nouveaux ou

peu connus. 4me. supplément. Mém. Soc. r. Sci.

Agr. Arts Lille 1849: 309-465, 466-479, pls. 1-14

(Also sep. publ., pp. 5-161, Paris, 1850 ).

SCHINER, LR., 1866. Die Wiedemann'schen Asiliden,

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flúgeligen Insekten 1: xxx1i + 608 pp., 7 pls.

Hamm.

INDEX

(Synonyms in bold and italic)

connexus (Wiedemamn), 1828 (Asilus), Eichoichemus, p. 98, 99

Eichoichemus Bigot, 1857, pp. 98, 99, 101, 102

eraxoides (Curran), 1935 (Promachina), Eichoichemus, p. 98

flavianalis (Macquart), 1848 (Erax), Eichoichemus, p. 98, 99

gavius (Walker), 1851 (Asilus), Eichoichemus, p. 99

hyalipennis (Macquart), 1838 (Erax), Proctophoroides, p. 99

kalettai Ayala, 1978, Eichoichemus, p. 99

latiforceps (Bromley), 1928 (Erax), Proctophoroides, p. 99

lizbethae Ayala, 1978, Eichoichemus, p. 99

lycorius (Walker), 1851 (Asilus), Eichoichemus,p. 99

melaleucus (Wiedemanmn), 1828 (Asilus), Elichoichemus, p. 99

neowillistoni (Bromley), 1933 (Erax), Eichoichemus, pp. 99, 101, 102, figs. 1-8

Proctophoroides, gen. n. pp. 98, 99

Proctophorus Schiner, 1866, pp. 98, 99

propinquus (Bromley), 1928 (Erax), Eichoichemus, p. 99

pulchripes (Bromley), 1928 (Erax), Wygodasilus, p. 99

pumilus (Macquart), 1850 (Erax), Eichoichemus, p. 99

pyrrhomystax (Wiedemanmn), 1828 (Asilus), Eichoichemus, p. 99

willistoni Bromley, 1928 (Erax), p. 99

Wygodasilus, gen. n. pp. 98, 99

100

American genera of Asilidae. IX. 3. Asilinae, Eichoichemus-group: ARTIGAS J. N. 8: N. PAPAVERO

0.5 mm

Fics. 1-5: Eichoichemus neowillistoni (Bromley). 1-3: male terminalia in lateral, dorsal and ventral views; 4-5: ae-

deagus in lateral and dorsal views.

101

Gayana Zool. 59(1), 1995.

Fis. 6-8: Eichoichemus neowillistoni (Bromley). 6-7: apex of female abdomen in dorsal and lateral view, showing

situation of the spermathecae; 8: spermathecae.

102

Gayana Zool. 59(1): 103-108, 1995.

ISSN 0016-531X

ELENCO SISTEMATICO Y BIBLIOGRAFIA DE LAS AVISPAS

SESILIVENTRES (HYMENOPTERA:SYMPHYTA) DE CHILE

SYSTEMATIC LIST AND BIBLIOGRAPHY OF THE SESSILIVENTRI

SAWFLIES (HYMENOPTERA: SYMPHYTA) FROM CHILE

David R. Smith! y Vicente Pérez D'A.?

ABSTRACT

Thirty-eight species in six families of Symphyta (Argi-

dae, Tenthredinidae, Pergidae, Xiphydriidae, Siricidae,

and Orussidae) are listed for Chile, and a bibliography

is presented. Four species have been introduced into

Chile, but the others are endemic. Most taxa have clo-

ser affinities to the Australian and Holarctic sawfly

fauna than to that of the rest of South America.

KeYworDs:Symphyta, argidae, Tenthredinidae,

Pergidae, Xiphydriidae, Siricidae, Orussidae.

INTRODUCCION

El conocimiento de las avispas sesiliventres

de Chile se inicia con las descripciones de espe-

cies de Spinola (1851), a las que siguen las de

Philippi (1871, 1873), Kirby (1882), Konow

(1899, 1904, 1905), Rohwer (1910, 1911),

Bréthes (1910, 1915, 1919), Benson (1938a,

1954, 1955, 1959), Malaise (1942, 1944) y Smith

(1973a, b, 1974, 1980, 1983, 1988, 1990 y 1992),

correspondiendo a este último autor aproximada-

mente un tercio de las 38 especies reconocidas

para Chile.

La primera mención en Chile de los

Symphyta como grupo es la de Reed (1893). En

1916 Porter publica un catálogo de los Siricidae

¡Systematic Entomology Laboratory, PSI, Agricultural

Research Service, U.S. Department of Agriculture, c/o

National Museum of Natural History NHB 168, Was-

hington, D.C. 20560 USA.

“Universidad de Magallanes, Instituto de la Patagonia,

Avda. Bulnes Km. 4 Norte, Casilla 113-D, Punta Are-

nas, Chile.

RESUMEN

Se presenta una lista actualizada de las treinta y ocho

especies de avispas sesiliventres de Chile (Hymenop-

tera, Symphyta), que representan a seis familias (Argi-

dae, Tenthredinidae, Pergidae, Xiphydriidae, Siricidae

y Orussidae), con la bibliografía correspondiente. Cua-

tro especies son introducidas y el resto son endémicas.

La mayoría de los taxones tienen afinidades más estre-

chas con la fauna australiana y holártica que con la del

resto de Sudamérica.

PALABRAS CLAVES: Symphyta, Argidae, Tenthredinidae,

Pergidae, Xiphydriidae, Siricidae, Orussidae.

y en 1929 y 1930 una introducción al estudio de

los Tenthredinidae, iniciándose una serie de refe-

rencias sobre Caliroa cerasi (Linnaeus) (Izquier-

do, 1921a, b; Porter, 1930a, c; Campos, 1953;

Caltagirone, 1957; González, 1989). Se agregan

las de otras especies fitófagas introducidas: Ne-

matus desantisi Smith (González et al., 1986) y

Ametastegia glabrata (Fallén) (Carrillo et al..

1990). Las únicas citas de especies parasitoides

son las de Barriga (1990), quien informa sobre

adultos de Orussidae obtenidos en crianzas de

Coleoptera.

A Claude-Joseph (1929, 1930, 1933) se de-

be el estudio de la biología de Ucona acaenae

Smith y su introducción en Nueva Zelanda. Los

detalles de la infructuosa radicación de esta espe-

cie en dicho país están expuestos en Smith

(1974) y Valentine y Walker (1991).

Bradley (1921) trata la zoogeografía de los

Symphyta en América del Sur, con énfasis en

Chile.

Rohwer (1925) revisa y redescribe las espe-

cies de Philippi (1871, 1873). Finalmente, Smith

(1973a, b, 1980, 1983, 1988, 1990, 1992 en pren-

103

Gayana Zool. 59(1), 1995.

sa) aclara los problemas de identificación, diluci-

da las confusiones nomenclaturales y describe

nuevas especies chilenas dentro del contexto sis-

temático general de los Symphyta.

De las 6 superfamilias y 14 familias de

Symphyta consignadas en Gauld y Bolton

(1988), LaSalle y Gauld (1993) y Goulet y Huber

(1993), están representadas en Chile 3 superfami-

lias y 6 familias.

El objetivo de este trabajo es presentar una

lista actualizada de las especies descritas de

Symphyta de Chile, siguiendo el marco sistemá-

tico de Abe y Smith (1991), complementada con

la bibliografía que fundamenta los diversos taxo-

nes citados.

En las fechas de publicación de la “Revista

Chilena de Historia Natural” se sigue a Pérez

D'A (1967).

ELENCO SISTEMATICO

Orden HYMENOPTERA

Suborden SYMPHYTA

En la región Neotropical existen más de

1000 especies pertenecientes a 11 familias, para

las cuales Smith (1988) confeccionó una clave.

La fauna de Chile es pequeña comparada con la

de otras regiones, pero su composición es muy

diferente a la del resto de Sudamérica. De los 23

géneros, cuatro están representados por especies

introducidas, tres se encuentran en otras partes de

Sudamérica, una está presente también en el he-

misferio norte, una también en Australia y 14 son

endémicas de Sudamérica meridional. La mayo-

ría de los géneros endémicos tienen afinidades

con las faunas holártica y australiana. Los Philo-

mastiginae y Conocoxinae de los Pergidae, los

Derecyrtimi de los Xiphydriidae y los Orussidae

tienen contrapartes en la Región Australiana. Los

géneros Periclista y Notofenusa de los Tenthredi-

nidae tienen contrapartes en la Región Holártica.

Distribuciones más detalladas se encuentran en la

literatura que se refiere a los grupos específicos.

Se conocen los hospedantes de muy pocas

especies, los que se anotan en cada caso.

Superfamilia TENTHREDINOIDEA

Familia Argidae

En la Región Neotropical se presentan más

de 350 especies distribuidas en 32 géneros y 5

subfamilias (Smith, 1992) pero sólo una de éstas

104

se encuentra en Chile.

Subfamilia Sterictiphorinae

Género Brachyphatnus Konow, 1906.

B. vescus Smith, 1992. Norte de Chile, Atacama

y Coquimbo.

Familia Tenthredinidae

Una gran familia con más de 400 especies

en la Región Neotropical.

Subfamilia Nematinae

Tribu Nematini

Género Nematus Panzer, 1801

N. desantisi Smith, 1983. Chile Central. Introdu-

cida. Hospedantes: Salix, Populus. Véase Gonzá-

lez, 1986, 1989; González et al., 1986; Ovruski y

Smith, 1993.

Subfamilia Blennocampinae

Tribu Lycaotini

Género Trichotaxonus Rohwer, 1910

T. coquimbensis (Spinola, 1851). Coquimbo a

Llanquihue. (= Blennocampa chilensis Brethes,

1910, macho; = Zarca chilensis Brethes, 1919,

macho; = Trichotaxonus reedi Rohwer, 1910,

“hembra” = macho (Smith, 1973a); = Netrocerus

solox Enderlein, 1920; = Kuschelia solox Malai-

se, 1949). Véase Smith, 1973a.

Tribu Blennocampini

Género Ucona Smith, 1974

U. acaenae Smith. Cautín. Hospedante: Acaena

spp. Introducida en Nueva Zelanda desde Chile

en 1928 con el nombre de Antholcus varinervis

Spinola, para el control de la maleza Acaena an-

serinifolia, pero fracasó su establecimiento

(Claude-Joseph 1929, 1930, 1933; Miller, 1970;

Smith, 1974; Valentine y Walker, 1991).

Género Periclista Konow, 1886. Las etiquetas de

los especímenes estudiados indican que las espe-

cies de este género son devoradores externos de

hojas de Nothofagus. El género probablemente se

encuentra en todos los bosques de Nothofagus de

Chile y Argentina. Periclista es un género holár-

tico y la mayoría de las especies en América del

Norte y Eurasia están asociadas a Quercus. Hay

varias especies aún no descritas en Chile que au-

mentarán la lista que se presenta a continuación.

P. antarctica (Malaise, 1944). Ñuble a Magalla-

nes.

P. leucoma (Spinola, 1851). “Chile”.

Elenco sistemático y bibliografía de las avispas sesiliventres: SmrrH, D. R. € V. Perez D'A

P. limbata (Enderlein, 1920). Santiago a Osorno.

P. lorata Konow, 1905. Curicó a Valdivia.

Subfamilia Heterarthrinae

Tribu Caliroini

Género Caliroa O. Costa, 1859

C. cerasi (Linnaeus, 1758). Chile Central. Intro-

ducida. Hospedantes: Pyrus, Prunus, otras Rosa-

ceae. En algunas publicaciones de la literatura

antigua aparece como Eriocampoides limacina O

Caliroa limacina. Véase Camacho, 1917; Calta-

girone, 1957; Campos, 1953; González, 1989; Iz-

quierdo, 1921a, b; Porter, 1930a, c.

Tribu Fenusini

Género Notofenusa Benson, 1959.

Una especie, N.surosa, es minadora de hojas de

Nothofagus. Probablemente todas las especies

son minadoras de hojas y el género se encuentre

en todos los bosques de Nothofagus de Chile y

Argentina (Smith, 1973b). Notofenusa está estre-

chamente relacionado con el género Profenusa

del hemisferio norte, la mayoría de cuyas espe-

cies son minadoras de hojas de Quercus y Betula.

N.asorusa Smith, 1973b. Curicó a Bío-Bío.

N. cognata (Spinola, 1851). “Chile.”

N. flinti Smith, 1973b. Magallanes.

N. nema Smith, 1973b. Curicó a Malleco.

N. surosa (Konow, 1905). Santiago a Valdivia.

Subfamilia Allantinae

Tribu Empriini

Género Ametastegia A. Costa, 1882

A. glabrata (Fallén, 1808). Osorno, Valdivia. In-

troducida. Hospedantes: Rumex spp., Polygonum

spp.; las larvas pueden formar una celda pupal en

madera blanda, ramitas o tallos de otras plantas.

Véase Carrillo et al., 1990.

Género Antholcus Konow, 1904

A. varinervius (Spinola, 1851). Coquimbo a

Llanquihue. (=Zarca chilensis Brethes, 1919,

hembra). Los registros en la literatura bajo este

nombre con la planta hospedante Acaena y su

importación en Nueva Zelanda corresponden a

Ucona acaenae. Véase Smith, 1974.

Familia Pergidae

Más de 250 especies de Pergidae en 32 gé-

neros y 8 subfamilias habitan la Región Neotro-

pical (Smith, 1990). La subfamilia

Philomastiginae se presenta en Chile y Australia;

los Conocoxinae están restringidos a Chile y sur

de Argentina; los Acordulecerinae se distribuyen

desde Norteamérica a Chile.

Subfamilia Philomastiginae

Género Cerospastus Konow, 1899

C. volupis Konow, 1899. Maule a Valdivia. Hos-

pedante: Nothofagus, son devoradores externos

de sus hojas.

Género Ecopatus Smith, 1990

E. penai Smith, 1990. Arauco, Malleco.

Género Philoperra Smith (en prensa)

P.obscura Smith (en prensa). Ñuble.

Subfamilia Conocoxinae

Género Conocoxa Rohwer, 1911

C. armatipes (Malaise, 1942). O'Higgins, Arau-

co.

C. chalicipoda Rohwer, 1911. Malleco.

Género Lycosceles Konow, 1905

L. herbsti Konow, 1905. Curicó, Talca, Concep-

ción.

Género Nithulea Rohwer, 1911

N. porteri (Bréthes, 1919). “Chile”.

Subfamilia Acordulecerinae

Género Giladeus Brethes, 1919

G. gastricus Brethes, 1919. Santiago, Talca.

G. penai Smith, 1990. Santiago.

G. tuxius Smith, 1990. Llanquihue.

Género Tequus Smith, 1990

T. chilensis (Smith, 1980). Magallanes.

Superfamilia SIRICOIDEA

Familia Xiphydriidae

Las larvas de Xiphydriidae son taladradoras

de madera, las de las especies neárticas principal-

mente en pequeñas ramas y varillas de menos de

8 cm de diámetro. Las etiquetas de los especíme-

nes estudiados indican que algunas especies en

Chile pueden ser taladradoras de madera de

Nothofagus. Se conocen alrededor de 17 especies

en el Neotrópico (Smitk, 1988); Derecyrta se en-

cuentra en toda Sudamérica, mientras que Steiro-

cephala y Brachyxiphus están restringidos a

Chile y sur de Argentina.

Subfamilia Derecyrtinae

Tribu Derecyrtini

Género Derecyrta Smith, 1860

D. porteri (Brethes, 1919). “Chile”.

Género Steirocephala Benson, 1954

105

Gayana Zool. 59(1), 1995.

S. flavipes (Philipi, 1871). Valdivia a Magalla-

nes.

S. lateralba Smith, 1988. Osorno.

S. reedi (Kirby, 1882). “Chile”.

S. ruficeps (Brethes, 1915). Aconcagua, Llanqui-

hue.

Tribu Brachyxiphini

Género Brachyxiphus Philippi, 1871

B. grandis Philipi, 1871. Ñuble, Valdivia.

B. hyalinus Kirby, 1882. Magallanes.

B. impunctus Smith (en prensa). Maule, Malleco.

Familia Siricidae

No existen Siricidae originarios de Sudamé-

rica; la única especie en Chile es introducida. Las

larvas son taladradoras de madera, y todos los

miembros de los Siricinae se encuentran en árbo-

les coníferos.

Subfamilia Siricinae

Género Urocerus Geottroy, 1785

U. gigas gigas (Linnaeus, 1758). Ñuble a Malle-

co. Introducida.

Hospedante: Pinus.

Superfamilia ORUSSOIDEA

Familia Orussidae

De la Región Neotropical se han registrado

cinco géneros y 12 especies (Smith, 1988). Oru-

sella se encuentra sólo en Chile (pero otros

miembros de los Leptorussini son de Australia y

Africa), y Guiglia está presente tanto en Chile

como en Australia. Es la única familia de

Symphyta no fitófaga. Las larvas tienen una aso-

ciación parasítica o depredatoria con otros insec-

tos taladradores de madera. Barriga (1990)

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Subfamilia Orussinae

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Subfamilia Ophrynopinae

Tribu Guigliini

Género Guiglia Benson, 1938b

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REGLAMENTO DE PUBLICACIONES DE LA REVISTA GAYANA ZOOLOGIA

La revista Gayana Zoología, dedicada al distinguido naturalista francés radicado en Chile, don Claudio

Gay, es el órgano oficial de Ediciones de la Universidad de Concepción, Chile, para la publicación de

resultados de investigaciones originales en las áreas Biológicas y Ciencias Naturales relacionadas con la

zoología. Es periódica, de un volumen anual compuesto por dos números.

Recibe trabajos realizados por investigadores nacionales y extranjeros, elaborados según las normas del

presente reglamento. La recepción es permanente.

Acepta trabajos escritos en idioma español o inglés. La publicación en otros idiomas deberá ser

consultada previamente al Director.

Gayana Zoología recibe además libros para ser comentados y comentarios de libros, comunicaciones de

eventos científicos, obituarios, notas científicas, los cuales se publicarán sin costo luego de ser

aceptados por el Comité Editor.

Los trabajos deberán ser entregados en disco de computador según se especifica en el REGLAMENTO DE

FORMATO más tres copias impresas completas (incluir fotocopia de figuras y fotos originales), a doble

espacio con líneas de 15 cm de longitud y letra no menor de 12 puntos (excepto letras de la familia

Times).

El Director de la Revista, asesorado por el Comité de Publicación, se reserva el derecho de aceptar o

rechazar el trabajo. Estos se enviarán a pares para su evaluación.

TEXTO

El título principal debe ir todo escrito en letra mayúscula y expresar el contenido real del trabajo. Si

incluye un nombre genérico o específico, se indicará el rango sistemático inmediatamente superior (ej.

Orden, Familia).

El texto deberá contener: Título, título en inglés (o Español si el trabajo está en inglés), nombre de los

autores, dirección de los autores, Resumen, Abstract, Palabras claves y Keywords (máximo 12 palabras

o nombres compuestos separados por coma), Introducción, Materiales y Métodos, Resultados,

Discusión y Conclusiones, Agradecimientos y Bibliografía. Estos títulos deberán ir en mayúsculas sin

negrita. Los nombres de los autores, dirección de los autores, Palabras claves y Keywords deben ir en

altas y bajas (normal), al igual que el resto de los títulos no indicados arriba.

Si por alguna circunstancia especial el trabajo debe ser publicado en forma diferente a las disposiciones

anteriores, el autor deberá exponer su petición al Director.

La primera prueba de imprenta será enviada al autor principal para su corrección antes de la impresión

definitiva. Si ello fuera imposible o dificultoso, la corrección será realizada por un Comité de

Publicación ad hoc., dicha comisión no se hará responsable de lo mencionado en el texto, por lo cual se

solicita que los manuscritos vengan en su forma definitiva para ser publicado (jerarquizar títulos,

subtítulos, ortografía, redacción, láminas, etc.

Los nombres científicos y las locuciones latinas serán las únicas que irán en cursiva en el texto. La

primera vez que se cite una unidad taxonómica deberá hacerse con su nombre científico completo

(género, especie y autor).

Las medidas deberán ser expresadas en unidades del sistema métrico separando los decimales con punto

(0.5). Si fuera necesario agregar medidas en otros sistemas, las abreviaturas correspondientes deben ser

definidas en el texto.

Las citas en el texto deben incluir nombre del autor y año (ejemplo: Smith, 1952). Si hay dos autores se

citarán separados por 6 y seguidos del año previa coma (ejemplo: Gomez € Sandoval, 1985). Si hay

más de dos autores, sólo se citará el primero seguido de coma y la expresión et al. (ejemplo: Seguel ef

al., 1991). Si hay varios trabajos de un autor en un mismo año, se citará con una letra en secuencia

adosada al año (ejemplo: 1952a).

La Bibliografía incluirá sólo las referencias citadas en el texto, dispuestas por orden alfabético del

apellido del primer autor, sin número que lo anteceda. La cita deberá seguir las normas de Style Manual

of Biological Journals para citar correctamente fechas, publicaciones, abreviaturas, etc.

La nomenclatura se regirá por el Código Internacional de Nomenclatura Zoológica.

FIGURAS

Las figuras se numerarán en orden correlativo con números arábigos. Las tabias de igual modo con

números romanos. Cada tabla debe llevar un título descriptivo en la parte superior.

Los dibujos deben ser de alto contraste y deben llevar una escala para facilitar la determinación del

aumento.

Las fotografías se considerarán figuras para su numeración; serán en blanco y negro o en color,

brillantes, de grano fino y buen contraste y deben ser acompañadas de una escala para la determinación

del aumento. La inclusión de fotografías o figuras en color deberá ser consultada previamente al

Director de la Revista.

No se aceptarán fotografías y dibujos agrupados en la misma lámina. Las fotografías deben ser

recortadas para mostrar sólo los caracteres esenciales y montadas en cartulina blanca sin dejar espacios

entre ellas cuando se disponen en grupos.

En la copia impresa del trabajo se deberá indicar en forma clara y manuscrita la ubicación relativa de

las tablas y figuras, si procede.

Las ilustraciones deberán tener un tamaño proporcional al espacio en que el autor desea ubicarlas;

ancho una columna: 70 mm; ancho de página: 148 mm; alto de página: 220 mm incluido el texto

explicativo.

Las láminas originales no deberán tener más del doble del tamaño de impresión ni ser inferior a éste. Se

recomienda considerar las reducciones para los efectos de obtener los números de las figuras de similar

tamaño dentro del trabajo, luego que éstas se sometan a reducciones diferentes.

En el reverso de las láminas originales se deberá indicar el nombre del autor, título del trabajo y número

de figuras.

Al término del trabajo se deberá entregar en forma secuencial las explicaciones de cada una de las

figuras.

REGLAMENTO DE FORMATO

Los manuscritos se recibirán sólo en discos de computador de 3.5”, formateados para computadores

Apple Macintosh o IBM/PC compatibles. Los trabajos pueden tener el formato de cualquiera de los

siguientes programas: Microsoft Word (cualquier versión)- WordStar (3.0 al 6.0) - WordPerfect 4.2 Ó

5.1 (PC o Mac).

Letra. Cualquiera letra tamaño 12 o superior, excepto Times.

Espacios. Colocar un único espacio después de cualquier signo ortográfico [punto, coma, comillas, dos

puntos, punto y coma] y nunca antes del signo ortográfico. La única excepción a esta regla se aplica

en las iniciales del autor en la Bibliografía y en las citas en el trabajo.

Párrafos. Los párrafos deben ir sin sangría, justificados y sin espacio entre un párrafo y otro.

En lo posible evite las palabras subrayadas, si desea destacar algo utilice negrita. Destine los caracteres

cursiva para los nombres científicos o palabras latinas, incluso si se escriben en mayúsculas. Cuando

encabezan un párrafo deben ir en negrita cursiva.

66 >>

Comillas. Sólo usar doble comillas (** ”), no usar otro signo similar o equivalente.

Letras griegas. No incluir letras griegas en el texto, ni provenientes del teclado ni manuscritas. En su

lugar escribir el nombre de la letra (ejemplo: alfa), en la impresión definitiva aparecerá el carácter

griego.

Macho y Hembra: para indicar, en Material Examinado, los símbolos macho y hembra, éstos deben

escribirse (macho, hembra), en la impresión definitiva aparecerá el símbolo correspondiente.

Bibliografía. Los nombres de los autores deben ir en altas y bajas. Coloque un punto antes y después del

año de publicación (ejemplo: Smith, J.G. £ A.K. Collins. 1983.). No use sangrías. Para las referencias

que son volúmenes no use espacio después de dos puntos (ejemplo: Rev. Biol. Mar. 4(1):284-295).

Tablas. Reducir al máximo el uso de tablas o cuadros complicados o difíciles de componer. No usar

espaciador para separar una columna de otra en las tablas, para ello usar exclusivamente tabuladores.

No se aceptarán trabajos que contengan tablas confeccionadas con espaciador.

Los manuscritos que no cumplan con esta reglamentación serán devueltos a sus autores para su

corrección antes de incorporarlos al proceso de revisión.

VALOR DE IMPRESION

El valor de la publicación es de US$ 20.00 por página (con láminas en blanco y negro) y de US$ 35.00

por página (con láminas en color).

El Director de la Revista considerará la exención total o parcial del valor de publicación para

manuscritos no originados en proyectos de investigación.

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Adetomeris microphthalma (Ph.) (Lepidoptera: Saturniidae)......o.ocionnnnnnconncaresoneccnancanccnrnrnrnnnecarancncnanos 41

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de Deseamos establecer canje con revistas similares

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COMITE DE PUBLICACION

CASILLA 2407, CONCEPCION

CHILE

EDICIONES UNIVERSIDAD DE CONCEPCION