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BL ISSN 0073-4721

OJEA, N. Composiciön cualitativa y cuantitativa del microbentos de la laguna El Tigre (Rio Paraná, Argentina) ......

GRAZIA, J. & CAMPOS, L. A. Hypanthracos, um novo gênero de Pentatomini (Heteroptera: Pentatomidae) ...........

LUIGI, G.; RAPOSO, M. A. & SCHLOEMP, 1. M. Notas sobre a biologia de Dysithamnus xanthopterus (Burmeister,

NR poiesctsacagnas WERE caos seio ion cepierencruas ris redoma sina a Vi nda aba ae dic ims ris

ACUNA, F.H.;ZAMPONI,M. O. & PEREZ, C. D. Metodelogia para la cuantificación de algunas estructuras taxonómicas

CE À ra ERRAR ERR e NAO RI PERU NE IDE CURE OCO Rd PRENDE ARE 2 PO ND ND

GOMES, M. dos R. & PEIXOTO, L. P. Nova espécie de Hyla do grupo marmorata de Sergipe, nordeste do Brasil

er A DR A ECA HRNONERE AD SRD DE ABBLERPERINEERUENEUEREERHRRE

LEITE, F. P P. Fecundidade de sete espécies de gamarídeos (Crustacea, Amphipoda, Gammaridea) associados à alga

Cp PRE A O PS ADE AND SED RAD DESA AD NR

GARCIA, €. F; GARCIA, S. M. L. de & GARCIA, R. N. Aspectos histológicos do ovário durante o processo de

vitelogênese em Boophilus microplus (Acarina, Ixodidae). .........sesusieeecesereerenrereneeeeaaeersenerneraerererereerareraenaasnass

CASARI, S. A. & BELLUSCI, S. Larvae of Neotropical Coleoptera XXV, Pherhimius dejeani (Candêze, 1857) and P

fascicularis (Fabricius,1787) (Elateridae, Pyrophorinae, Hemirhipini). ...sseseseeeeseseserereseeeseereeseerseneeeeeereness

CANHEDO-LASCOMBE, V. L. & CORSEUIL, E. Caracterização das espécies de Gryllotalpidae (Orthoptera, Ensifera)

do Rio Grande do Sul, Brasil, com algumas observações biológicas e sonográficas .uessssssnesseesnesnnennennnnnnnennennennnn

BOMBONATO, M. T. S. & GREGÓRIO, E. A. Hemócitos de larvas de Diatraea saccharalis (Lepidoptera, Pyralidae):

avaliação de técnicas para análise em microscópio de contraste de fase ...uuunesnnsssnsssnnnsnnennnennnnnnennnnnnnnnnnnnannnnannnnnn

MIQUELARENA, A. M. & PROTOGINO, L. €. Una nueva especie de Oligosarcus (Teleostei, Characidae) de la cuenca

EG PREPARAR SANA E DESDE TER RU DRRO DA POP RO RPE MERO EIHEHEFEREER

RAMIREZ, M. J. & GRISMADO, C. J. A new Fernandezina from Brazil (Araneae, Palpimanidae) ...unnna.

YOUNG, P. S. & LETA, A. C. Antarctic Cirripedia (Crustacea) collected by the Brazilian Antarctic Program (1983-

ee ae SEPP Era ERR PRI RS | RR OVER S A EUR E RD RA NO UFER

ARGEL-DE-OLIVEIRA, M.M. & FIGUEIREDO, R. A. de. Aves que visitam uma figueira isolada em ambiente aberto,

NEN O RSA DO A DANE MIR RA SD ei RODE DRS SWR SO

GALINDEZ, E. J. & AGGIO, M. €. Análisis morfometrica del complejo linfomieloide de Mustelus schmitti

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Museu de Ciências Naturais

Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul

Programa de Apoio a Publicações Científicas

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Serie Zoologia

MUSEU DE CIÊNCIAS NATURAIS

órgão da

FUNDAÇÃO ZOOBOTÂNICA DO RIO GRANDE DO SUL

CGC 87.912.929/0001-75 - Supervisionada pela Secretaria da Agricultura e Abastecimento

Editor responsável: Maria Helena Mainieri Galileo

Comissão redatorial: Erica H. Buckup (Presidente), Inga L. Veitenheimer Mendes,

Maria Aparecida de L. Marques, Maria Lúcia Machado Alves, Maria Helena M.

Galileo.

Colaborador: Luciano de Azevedo Moura

BL ISSN 0073-4721

Iheringia

Série Zoologia

À revista IHERINGIA, Ser. Zool., é editada pelo Museu de Ciências Naturais,

órgão da Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, entidade de direito privado,

instituída pela Lei Estadual nº 6.497, de 20.12.72, supervisionada pela Secretaria de

Estado da Agricultura e destina-se à divulgação de trabalhos científicos originais,

inéditos, resultantes de pesquisa em Zoologia.

Este número foi editado e impresso na gráfica Pallotti em junho de 1996.

Tiragem 500 exemplares.

Endereço: Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Cx. Postal 1188,

CEP 90001-970 Porto Alegre, RS, BRASIL. Tel. (051) 336.1511; Fax (051)

336.1778.

Os artigos assinados são de responsabilidade dos autores. É permitida a

reprodução total ou parcial dos artigos da Revista, desde que seja citada a fonte.

Iheringia, Sér. Zoologia. v. 1, 1957 -

Porto Alegre, RS - Brasil, Museu de Ciências Naturais

Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul

1957 -

Semestral

ISSN 0073-4721

1. Zoologia-Periódicos - Brasil.

2. Trabalhos científicos - Zoologia - Brasil. I. Museu de

Ciências Naturais, Fundação Zoobotância do Rio Grande

do Sul

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Artigos publicados na Iheringia Sér. Zoologia são indexados por: Abstracts of

Entomology, Apicultural Abstracts, Bioresearch Index, Biological Abstracts, Centre

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MCT (Qenry BJFINEP

COMPOSICIÓN CUALITATIVA Y CUANTITATIVA DEL MICROBENTOS

DE LA LAGUNA EL TIGRE (RIO PARANA, ARGENTINA)

Nora Ojea!

ABSTRACT

QUALITATIVE AND QUANTITATIVE MICROBENTHOS COMPOSITION OF EL TIGRE POND

(PARANÁ RIVER, ARGENTINA). The relationships between the limnological features and the microbenthos

in a lentic environment of the Middle Paraná River floodplain were analyzed. A total of 43 taxa was recorded.

The most representative in density, diversity and species richness was Testacealobosia. Difflugia gramen var.

globulosa, D. oblonga oblonga, D. bin ucleata, D. kempnyi, Arcella discoides, Centropyxis aculeata tropica, €.

discoides, C. elongata, C. aculeata oblonga and Centropyxis sp. were dominant. The total highest density

obtained was 3000 ind. cm? in the summer. In the analysis of 17 biological and physico-chemical variables, the

first two principal components explain 47% of the total variance. The total density, D. oblonga oblonga, D.

gramen var. globulosa and Lesquereusia modesta caudata were the most important discriminant variables. The

qualitative distribution of the Testacealobosia was similar among the studied sites. Differences in the structure

of the microbenthos during the cicle analyzed, were mainly caused by water level and temperature.

KEYWORDS. Argentina, Paranä River, microbenthos, structure, Testacealobosia.

INTRODUCCIÓN

Los estudios sobre microbentos en Argentina son muy escasos a pesar de su

importancia en las tramas tróficas del fondo y del importante rol quejuega como indicadora

de calidad de aguas. Los antecedentes sobre el tema son las investigaciones realizadas en

ambientes del Paraná medio por BONETTO & EZCURRA DE DRAGO (1964),

EZCURRA DE DRAGO (1966) y BONETTO et al. (1970).

Las características hidrológicas de las lagunas del valle aluvial del río Paraná medio

son fuertemente influenciadas por las fluctuaciones del nivel hidrométrico del río, lo que

ocasiona la expansión o contracción de las mismas de acuerdo al ciclo anual de inundación

(DRAGO, 1989). La laguna El Tigre presenta esta característica y en la fase de inundación

se conecta al río Correntoso verificándose el flujo de agua del río hacia la laguna perdiendo

ésta temporariamente su identidad como ambiente lenítico, para volver a recuperarlo en

la fase de aislamiento.

1, Faculdad de Formación Docente en Ciencias, Universidad del Litoral, 9 de Julio 2655 (3000), Santa Fe, Argentina

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

4 OJEA

El objetivo es conocer la estructura del microbentos en relación con las principales

características limnológicas de un ambiente lenítico del valle aluvial del río Paraná medio

(Argentina).

MATERIAL Y MÉTODOS

El material fue extraído de la laguna El Tigre ubicada a 31° 41 'S - 60° 42'W (provincia de Santa Fe,

Argentina), con una longitud de 287 m y un volumen medio de 30800 m? (fig. 1).

Fig 1. Ubicación de la Laguna El Tigre, Argentina. Batimetria y morfometria de la laguna y las siete estaciones

de muestreo determinadas.

Se determinaron 7estaciones de muestreo en relación con la batimetría y morfometría de la laguna (fig.

1). Las estaciones 1,6y 7 se establecieron en la zona limnética; 2 y 5 próximas a lamacrofitia marginal compuesta

principalmente por Paspalum sp., Eichhornia crassipes, Polygonum sp. y Ludwigia sp.; la 3 en la zona marginal

ubicada en el extremo norte de la laguna, y la 4 sobre un sector de la orilla de sedimento arenoso.

Los muestreos se realizaron durante un ciclo anual (Febrero 1987 - Febrero 1988), con periodicidad

mensual. Em cada punto de muestreo se registraron los siguientes parámetros físicos y químicos: profundidad,

temperatura, transparencia del agua (disco de Secchi), pH, conductividad y oxígeno superficial y de fondo

(Horiba, modelo U-7), composición granulométrica de los sedimentos (según escala de WENTWORTH, 1932),

y porcentaje de carbono de los sedimentos según Schollenberger apud JACKSON (1964). En cada punto fue

extraída uma muestra con draga modelo "mud-snupper" de 25 cm? de superfície de extracción y 2 cm de

profundidad. Se fijaron en formol al 5%, y fueron filtradas en un tamiz de 45 um de abertura de malla. Debido

al método de fijación utilizado se perdieron los taxa de ciliados y flagelados. Estas muestras fueron depositadas

en el Instituto Nacional de Limnología (INALI-CONICET). Se analizó cuali y cuantitativamente una alícuota |,

de Icm? de cada muestra, mediante cámara de Sedwick-Raffter. La densidad numérica se expresó en ind. cm?.

Se calculó la riqueza taxonómica y el índice de diversidad de Shannon & Weaver, 1963 apud MARGALEF

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

Composiciön cualitativa y cuantitativa del microbentos ... 5

1974) y el índice de Constancia de Bodenheimer, 1938 apud DAJOZ (1974). Se seleccionaron 17 variables para

ser sometidas a un análisis de componentes principales y para determinar aquellas más importantes se aplicó

análisis discriminante.

RESULTADOS

La profundidad máxima alcanzada en la laguna fue de 3,37 m (fig.2) en el centro,

durante el mes de Junio (período de creciente), y el valor mínimo fue de 0,15m en el

estación 4, en el mes de Marzo coincidiendo con el período de estiaje. El período de

creciente (según el nivel hidrométrico del río Paraná, Puerto ciudad de Paraná, província

de Entre Ríos) fue durante el invierno y el de estiaje en primavera (fig.2). A partir de los

4m la laguna recibe agua procedente de la capa subterránea y de desborde de otras lagunas

adyacentes, produciéndose un aumento de la transparencia (fig.3). Luego, durante la fase

de inundación (Junio), a partir de los 4,90m la laguna permanece conectada al río

provocando un brusco descenso de los valores de transparencia por dilución de los

sedimentos. A lo largo de la fase de inundación los valores de transparencia vuelven a

aumentar por depositación de sedimentos. Dichos valores descienden cuando la laguna

queda aislada, durante la primavera y el verano.

El oxígeno de fondo (fig.4) presentó marcadas variaciones entre los distintos puntos

muestreados presentando mayores valores en la estación 4 y 7 con sedimento arenoso y

limo-arenoso respectivamente y valores más bajos en las estaciones 2 y 5 con sedimento

limo-arcilloso y mayor contenido de materia orgánica. La baja concentraciön de oxígeno

registrada en Febrero y Abril coincide con el período de mayor mineralización biológica.

La conductividad (fig. 5) presentó un marcado descenso durante el período de

conexión con el río aumentando luego gradualmente. El pH (fig.5) osciló entre 6,4 y 7,4

presentando pocas variaciones a lo largo del ciclo estudiado. El valor máximo de

temperatura fue de 26,7 °C y el mínimo de 12º C (fig.6).

Los sedimentos de fondo en las estaciones 1, 2, 5 y 6 son limo-arcillosos, en la 3 y

7 limo-arenosos y en la estación 4 arenosos. El contenido de carbono en los sedimentos fue

menor en las estaciones 3, 4 y 7 con promedios de 0,0757; 0,0586 y 0,858gC%,

respectivamente, mientras que la 1,2, 5 y 6 presentaron valores promedio de 1,595; 1,153;

1,510 y 1,587gC%, respectivamente. Las estaciones 2 y 5 presentan en sus sedimentos

materia orgänica particulada de mayor tamafio.

Composición cuali y cuantitativa del microbentos. La mayor densidad numérica fue

registrada en la estación 2 con 3000 ind. cm? y la menor en la estación 3 con 273 ind.

cm”. Los promedios de densidades numéricas registrados a lo largo del ciclo estudiado

(fig. 7) muestran que en la mayor parte del período no existen grandes variaciones en la

densidad, la que aumenta sólo en los meses de verano, coincidiendo con el período de

mayor producción biológica.

Testacealobosia presenta mayores valores en comparación con Rotifera y Nematoda

(fig.8). Se observa leves variaciones en la densidad de los tecamebianos durante la mayor

parte del afio, mostrando solo un brusco ascenso durante los meses de verano. Nematoda

varía muy poco, con mayores densidades en los meses de primavera (Setiembre y

Noviembre). Rotifera, alcanza dos picos máximos de densidad, el primero cuando la

laguna se halla conectada al río, el cual podría deberse a un ingreso de especies de origen

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

6 OJEA

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Figs. 2-6. Variaciones promedio y desvio stándar: 2, nivel hidrométrico del Río Paraná (Puerto ciudad de Paraná,

provincia de Entre Ríos) y de la profundidad de la laguna El Tigre; 3, transparencia; 4, oxígeno; 5, conductividad

y pH: 6, temperatura.

lótico, y el segundo pico se observa en primavera-verano cuando la laguna halla aislada.

La riqueza taxonómica osciló entre 35 especies (estación 2) y 2 especies (estaciones

3y4) (fig. 9) y la riqueza taxonómica promedio desciende abruptamente en Febrero (fig.

10).

La diversidad especifica promedio oscilö entre 2,4 (estaciön 5) y 1,3 (estaciön 3)

(fig. 11). La variación de los valores promedio de diversidad (fig. 12) muestra mayores

fluctuaciones que en la riqueza taxonómica, con un comportamiento muy similar al del

nivel hidrométrico notándose que la diversidad disminuye cuando la laguna se conecta al

rio y aumenta durante la fase de aislamiento.

Se determinaron 43 entidades taxonómicas (tabla I) siendo Testacealobosia el grupo

dominante con 34 especies. Los restantes taxa corresponden a nematodes (3 especies),

rotiferos (2 especies), gastrotricos (1 especie), tardigrados (1 especie), oligoquetos (1

especie) v ostrácodos (I especie).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

Composición cualitativa y cuantitativa del microbentos ... 7

Entre los tecamebianos el género mejor representado fueDifflugia con 17 especies.

Le sigue Centtupyxis con 6 especies,Protocucurbitella con 4,Arcella con 3 Lesquereusia,

Euglypha, Nebela y Pontigulasia con una especie.

Las especies más importantes en densidad y constancia fueron: Difflugia gramen

var. globulosa, D. oblonga oblonga, D. binucleata, D. kempnyi, Arcella discoides,

Centropyxis aculeatatropica, C. discoides,G elongata, C.aculeataoblongay Centropyxis

sp.

En las estaciones 1, 2, 5 y 6 se observó mayor número de especies constantes de

tecamebianos (tablaI). Las estaciones 1 y 6 ubicadas en la zona limnética tienen sedimento

limo-arcilloso y alto contenido de materia orgänica disponible. Las estaciones 2 y 5, con

sedimento limo-arenoso y alto contenido de materia orgänica se hallan cercanas a la

macrofitia marginal por lo tanto al morir dicha vegetaciön, provee de un sustrato favorable

para el desarrollo de los protozoos ya que los microorganismos que intervienen en los

procesos de descomposiciön les sirven de alimento. El menor nümero de especies

constantes fue registrado en laestaciön 3, con bajo contenido de carbono en los sedimentos,

siendo además la estación más cercana a laconexión con elrío, ubicación con características

muy inestables.

Del análisis de componentes principales fueron seleccionados los dos primeros

factores (fig. 13). El primer componente principal, Factor 1, explica el 30,08% de la

varianza, y las variables ordenadas por este factor corresponden a: conductividad,

densidad, D. gramen var. globulosa y D. oblonga oblonga. La densidad se relaciona

negativamente con la profundidad, la transparencia y el oxígeno superficial y de fondo y

positivamente con la temperatura y la conductividad. Dicha densidad está dada por D.

gramen var. globulosa, D. oblonga oblonga y Protocucurbitella mitrata. De acuerdo a lo

expresado el primer competente principal está determinado fundamentalmente por vari-

ables biológicas, es decir la densidad y las principales especies de tecamebianos cuya

distribución depende de la profundidad, transparencia conductividad, temperatura, oxí-

geno superficial y de fondo.

El segundo componente principal corresponde al Factor 2 que explica 17,28% de la

varianza. Este factor está determinado principalmente por variables físico-químicas

siendo la característica más notable la relación negativa que existe entre la diversidad y la

temperatura, y su relación positiva con la profundidad y el oxígeno superficial. El mismo

tipo de relación se observa entre Protocucurbitella mitrata y los parámetros físicos y

químicos.

Las variables más importantes que surgieron del análisis discriminante fueron:

densidad,D. oblonga oblonga, D. gramen var. globulosa, Lesquereusia modesta caudata,

Centropyxis aculeataoblonga, Centropyxis sp. 1,4. discoides, diversidad,Protocucurbitella

coroniformis var. pusilla, y D. binucleata cuyos valores deWilks-lambda son

respectivamente 0,76, 0,55, 0,43, 0,33, 0,29, 0,25, 0,23, 0,21, 0,19 y 0,18.

DISCUSIÓN

El microzoobentos de la laguna El Tigre está compuesto por Protozoa, principalmente

Testacealobosia, incluyendo también a Nematoda, Rotifera y Gastrotricha. En comparación

a los estudios realizados en otros ambientes leníticos del valle aluvial del río Paraná medio,

se observó mayor riqueza específica de tecamebianos en relación a lo sefialado por

EZCURRA DE DRAGO (1966) y BONETTO et al. (1970) que fueron 24 y 11 especies

respectivamente.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

8 OJEA

Tabla 1. Composiciön del microbentos en cada estaciön de muestreo de la laguna, El Tigre, Rio Paraná,

Argentina, de acuerdo al índice de constancia. A= 50% (constante), B = 25 - 50% (accesoria) y C = 25%

(accidental).

TAXA ESTACIONES

Re O

PROTOZOA

TESTACEALOBOSIA

Difflugia acuttissima Deflandre, 1931

. gramen var. globulosa Stepanek & Jiri, 1958

. ventricosa Deflandre, 1929

.oblonga var. oblonga Ehrenberg. 1838

. scalpellum Penard, 1899

. binucleata Penard 1902

. kempnyi Stepanek, 1952

. urceolata Carter, 1864

. acuminata var. inflata Penard, 1902

. pleustonica Dioni, 1970

. lacustris Penard, 1902

. elegans var. angustata Penard, 1890

D. litophila Lievre & Thomas, 1958

D. foissneri Chardez, 1986

D. fragosa Hempel, 1898

Difflugia sp. 1

Difflugia sp. 2

Pontigulasia compressa Rhumbler, 1895

Euglypha crenulata Wailes, 1913

Lesquereusia modesta var. caudata Playfair, 1917

Protocucurbitella coroniformis var. pusilla Lievre & Thomas, 1960

P. coroniformis pusilla fma. acuminata Lievre & Thomas, 1960

P. mitrata Chardez, 1986

Protocucurbitella sp.

Nebela teres Jung, 1942

Arcella discoides Ehrenberg, 1871

A. dentata Ehrenberg, 1938

A. rontundata Playfair, 1917

Centropyxis aculeata var. tropica Deflandre, 1929

C. aculeata var. oblonga Deflandre, 1929

C. discoides Penard, 1890

C. elongata Thomas, 1959

Centropyxis sp. 1

Centropyxis sp. 2

ROTIFERA

Rotaria sp.

Habrotrocha sp.

GASTROTRICHA

OLIGOCHAETA

Aulodrilus pigueti Kowalewski, 1914

NEMATODA (sp. 1)

NEMATODA (sp.2)

Rhabditida sp.

TARDIGRADA

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Como lo expresó EZCURRA DE DRAGO (1966) para la fauna bentónica de

distintas cuencas del río Paraná, los tecamebianos fueron los más representativos de la

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

Composición cualitativa y cuantitativa del microbentos ...

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ESTACIONES

Figs. 7-13. 7, Promedios de densidades numéricas de los taxa registrados a lo largo del ciclo estudiado. 8,

Variaciön temporal de las densidades de Testacealobosia, Rotifera y Nematoda. 9, Variaciones de los valores

promedio de la riqueza taxonómica a lo largo del ciclo estudiado. 10, Variaciones promedio y desvio eständar

de la riqueza taxonómica en las siete estaciones de muestreo determinadas. 11, Variaciones de los valores

promedio de la diversidad específica a lo largo del ciclo estudiado. 12, Variaciones promedio y desvio eständar

de la diversidad especifica en las siete estaciones de muestreo determinadas. 13, Ordenaciön de las diecisiete

en el plano definido por los componentes principales 1 y 2. C, Conductividad; OS, Oxigeno sperficial; OP,

Oxígeno profundo; P, profundidad; pH, pH; S, transparencia; T, Temperatura; € ‚Densidad; O ‚Diversidad;

O, Difflugia gramen var. globulosa;, D. oblonga oblonga; <7, D. binucleata; €), Protocucurbitella

mitrata; &, Lesquereusia modesta caudata; A , Arcella discoides; _\, Centropyxis sp.l; A, Centropyxis

aculeata oblonga.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

10 OJEA

microfauna de fondo, siguiéndole los nematodes. Los taxa registrados en la laguna

coinciden con lo expresado por MADONI (1989, 1991) en lagos italianos. En nuestro

estudioTestacealobosia está representado por 34 especies, en contraposición alo expresado

por el citado autor que sefiala 11 especies para el Lago Suviana y 4 especies para el Lago

Brasimore. La densidad de tecamebianos registrada está dentro de los valores dados por

MADONI (1989, 1991) que fueron de 3340 ind.cm”? para el Lago Suviana, pero supera

ampliamente lo registrado para el Lago Brasimore que fue de 281 ind.cm?. En dichos

estudios, la máxima densidad de tecamebianos fue registrada en otofio, mientras que en El

Tigre se verificó durante el verano. Sin embargo, Rotifera se comporta de igual manera que

lo expresado por MADONI (1989, 1991), presentando altas densidades durante el verano.

Por el contrario, Nematoda en nuestro estudio se halló mejor representada durante los

meses de primavera, mientras que en los lagos italianos lo fue en invierno.

La densidad de tecamebianos en la laguna El Tigre muestra variación espacial

observándose mayores valores en las estaciones con alto contenido de materia orgánica

particulada gruesa, y menores valores en aquellas estaciones caracterizadas por tener

mayor porcentaje de materia orgánica particulada fina.

La variación espacial de la riqueza taxonómica es menor. Los tecamebianos se

alimentan básicamente de bacterias y detritus (formas bacteriófagas detritívoras según

PRATT & CAIRNS,1985). Los sedimentos de los puntos analizados presentan una buena

oferta alimenticia lo que determina una distribución cualitativamente homogénea de

dichos organismos en toda la laguna, si bien los tecamebianos prefieren un tipo de sustrato

más que otros (BERZINS & STENDOTTER, 1990).

Las variaciones temporales en los parámetros físicos y químicos influyen en la

distribución del microzoobentos, como lo observado en el fitoplancton (GARCIA DE

EMILIANI, 1993) y zooplancton (JOSE DE PAGGI, 1993).Así en períodos de inundaciön

las condiciones son muy inestables, lo que queda reflejado por la baja densidad y

diversidad registrada. En período de aislamiento, donde la laguna retoma sus características

de ambiente lenítico y los factores físico-químicos se mantienen más estables, ocurre una

recuperación de esta fracción del bentos registrändose los mayores valores de densidad.

Dichos valores se registran a partir de fines de la primavera y durante los meses de verano,

coincidiendo con el período de mayor biomasa de fitoplancton (GARCIA DE EMILIANI,

1993) y la mayor abundancia y riqueza específica de rotiferos (JOSE DE PAGGI, 1993).

La estructura del microbentos depende principalmente de las variaciones temporales

determinadas por las oscilaciones del nivel hidrométrico y la temperatura. Es una

comunidad estructuralmente simple, con bajos valores de diversidad, prevaleciendo

aquellas especies más ubícuas. El bajo número de especies encontradas en la laguna El

Tigre, al igual que lo senalado por MADONI (1989,1991), indica la alta inestabilidad del

ambiente, que se debe a la variación de las condiciones hidrológicas de la laguna por su

conexión temporaria con el ambiente lótico al que se asocia.

Agradecimientos. A las profesoras Inés Ezcurra de Drago y Mercedes Marchese por la lectura crítica

del manuscrito, como asi también al Instituto Nacional de Limnología (INALI-CONICET) por facilitarme el

material de estudio.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

Composición cualitativa y cuantitativa del microbentos ... 11

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BERZINS, B. & STENDOTTER, U. 1990. Ecological studies of freshwaters rhizopods. Hydrobiologia,

Dordrecht, 202:1-11.

BONETTO A. & EZCURRA DE DRAGO I. 1964. La fauna bentönica de algunas aguas rápidas del Paraná

medio. Phisis, Buenos Aires, 24 (68):311-316.

BONETTO,A., EZCURRA DE DRAGO, I., GARCIA,M.O. &DI PERSIA, D.1970. Estructura y distribución

del complejo bentónico en algunas cuencas leniticas del Paraná medio. Acta zool. lilloana, San Miguel de

Tucumán, 27:63-100.

DAJOZ, R. 1974. Tratado de Ecología. Madrid, Mundi Prensa, 610 p.

DRAGO, E. 1989. Morphological and hydrological characteristics of the flood plain ponds of the Middle Paraná

River (Argentina). Revue Hydrobiol. trop., Bondy, 22(3): 183-190.

EZCURRA DE DRAGO, I. 1966. Notas preliminares acerca de la fauna bentónica de las cuencas del Paraná

medio. Physis, Buenos Aires, 26(72): 313-330.

GARCIA DE EMILIANI, M.O. 1993. Seasonal succession of phytoplankton in a lake of the Paraná River

floodplain, Argentina. Hydrobiologia, Dordrecht, 264: 101-114.

JACKSON, M. 1964. Análisis químicos de suelos. Barcelona, Omega, 662p.

JOSE DE PAGGI, S. 1993. Composition and seasonality of planktonic rotifers in limnetic and litoral regions of

a floodplain lake (Paraná River system). Revue Hydrobiol. trop., Bondy, 26(1):53-63.

MADONI, P. 1989. Comunity structure of the microzoobenthos in Lake Suviana (Tusco-Emilian Apennines).

Bool. Zool., Modena, 56:159-165.

- . 1991. Microzoobenthos in the Brasimore Reservoire (Tusco-Emilian Apennines): Community structure and

distribution. Verh. Internat. Verein. Limnol., Stuttgard, 24: 1405-1408.

MARGALEF, R. 1974. Ecología. Barcelona, Omega, 951p.

PRATT,J. & CAIRNS, J.1985. Functional groups in the Protozoa: Roles in differing ecosystems. J. Protozool,

Lawrence, 32(3): 415-423.

WENTWORTH, €. 1932. A scale of grade and class terms for clastics sediments. J. Geol., Chicago, 30: 377-

392:

Recebido em 11.02.1994; aceito em 2.01.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 3 - 11, 18 jun. 1996

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HYPANTHRACOS, UM NOVO GÊNERO DE PENTATOMINI

(HETEROPTERA: PENTATOMIDAE)

Jocelia Grazia'”

Luiz Alexandre Campos!”

ABSTRACT

HYPANTHRACOS, A NEW GENUS OF PENTATOMINI (HETEROTERA: PENTATOMIDAE). A

new Neotropical genus of Pentatomini Hypanthracos and two new species, the type species H. meridionalis

from Uruguay and A. ditarsus from Brazil are described. A study of the genitalia of both sexes and geographical

distribuion data are also included.

KEYWORDS. Hypanthracos, Heteroptera, Pentatomini, Taxonomy, rice.

INTRODUÇÃO

A tribo Pentatomini conta hoje com mais de 100 gêneros neotropicais descritos,

sendo uma das tribos mais bem estudadas e conhecidas dentre os Heteroptera da região

Neotropical (ROLSTON & MCDONALD, 1984). Não obstante, eventualmente novas

espécies e gêneros são encontrados conforme são intensificadas as coletas, principalmente

na região amazônica. É proposto um novo gênero com duas espécies alopátricas, que se

distribuem uma na Amazônia brasileira e outra no sul do Brasil (Rio Grande do Sul) e

Uruguai.

MATERIAL E MÉTODOS

A dissecação, o tratamento das genitálias e a confecção das ilustrações seguem GRAZIA et al. (1993).

A terminologia das peças de genitália está de acordo com DUPUIS (1995, 1970). As medidas efetuadas

correspondem ao valor absoluto de 15 e 19 de cada espécie. Todas as medidas estão expressas em milime-

tros.

As siglas das coleções examinadas e os nomes dos curadores e/ou responsáveis pelas coleções são

citados entre parênteses: AMNH - American Museum of Natural History, New York, USA (R. T. Schuh);

MACN - Museo Argentino de Ciencias Naturales, Buenos Aires, Argentina (A. Bachmann); MCNZ - Museu

de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brasil (H. A. O. Gastal);

MZSP - Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, São Paulo, SP, Brasil (U. R. Martins); UFRG -

Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brasil (J. Grazia).

1. Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Av. Paulo Gama s/n, 90046-900 Porto Alegre RS, Brasil.

2. Bolsista do CNPq.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 13-19, 18 jun. 1996

14 GRAZIA & CAMPOS

Hypanthracos, gen. n.

Espécie-tipo: Hypanthracos meridionalis, sp. n.

Etimologia. O nome genérico refere-se à coloração ventral negra (do grego

anthracos = relativo a carvão; hypo = sob, embaixo). Gênero masculino.

Diagnose. Cabeça triangular, jugas afiladas no ápice, pouco mais curtas que o clípeo

e, em vista lateral, posicionadas num plano dorsal do clípeo. Ângulos umerais desenvol-

vidos em pequenos espinhos agudos, dirigidos ântero-lateralmente. Carena do mesoterno

estreita e pouco elevada, superfície desnsamente pilosa. Segundo artículo rostral arquea-

do, lateralmente comprimido. Ápice do 7º segmento do conexivo desenvolvido em espi-

nho agudo nos machos.

Descrição. Forma alongada, bastante convexa, especialmente na face ventral. Ca-

beça mais longa que larga, tão longa quanto o pronoto, não declivente. Margens externas

das jugas sinuosas, convergentes no ápice; jugas afiladas no ápice, mais curtas que o

clípeo. Búculas sinuadas, estendendo-se até a base da cabeça; anteriormente em pequeno

dente triangular, evanescentes porteriormente. Tubérculos anteníferos encobertos quase

totalmente pelas jugas, sendo pouco visíveis em vista dorsal. Rostro alcançando os pri-

meiros segmentos abdominais, 1º artículo contido entre as búculas; 2º artículo arqueado

comprimido lateralmente; 3º e 4º artículos subcilíndricos. Pronoto: margem anterior

rasamente côncava; dentículos dos ângulos anteriores triangulares. Metade anterior do

pronoto fortemente declivente. Densamente pontuado, coloração de fundo de ocre a co-

bre, com pontuações grandes, negras, frequentemente confluentes. Margens ântero-late-

rais do pronoto íntegras. Ângulos umerais desenvolvidos em espinhos agudos, projetados

ântero-lateralmente, não alcançando o nível da margem anterior do pronoto. Prosterno

não carenado ou sulcado. Escutelo: coloração e pontuações como no pronoto. Ângulos

basais com pequenas fóveas negras. Margens laterais sub-retilíneas, disco do escutelo

pouco elevado. Mesosterno com carena estreita e pouco elevada, de aspecto aveludado

devido à densa pilosidade. Hemiélitros: coloração ocre; cório com pontuações negras,

menores e mais esparsas que as do pronoto e escutelo, raramente confluentes. Ápice do

cório quase alcançando a margem posterior do 5º segmento do conexivo. Membrana

quase alcançando o ápice do abdome. Veias em número de 8 a 10, subparalelas, partindo

de uma veia transversal única, com exceção de uma ou duas veias mais externas de acor-

do com o exemplar. Metasterno não carenado, rasamente côncavo, densamente piloso.

Peritrema ostiolar reduzido, sub-auricular; área evaporatória meso e metapleural bastan-

te rugosa e enegrecida, ocupando pouco mais da metade basal da metapleura e uma área

semi-lunar, mais ou menos ampla, junto à margem posterior da mesopleura. Pernas ocre-

amareladas, exceto as seguintes áreas negro-foscas: coxas, fêmures anteriores (exceto

junto à articulação basal), metade distal dos fêmures médios e posteriores, e junto à arti-

culação basal das tíbias. Fêmures apresentando uma fileira de cerdas ventrais, larga e

uniformemente espessadas. Tíbias dorsalmente sulcadas. Conexivo de coloração ocre,

com densa e fina pontuação negra intercalada a máculas irregulares ocre-amareladas.

Ângulo póstero-lateral do 7º segmento do conexivo dos machos em espinho agudo, sen-

do os demais rombos; nas fêmeas todos são rombos. Abdome totalmente negro-fosco na

sua face ventral.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 13-19, 18 jun. 1996

Hypanthracos, um novo gênero de Pentatomini... 15

Genitália Ss : pigóforo com a abertura dorsal reduzida. Bordo ventral formando

dois folhetos carenados, um mais ventral (externo) e outro mais dorsal (interno), interca-

lados por uma escavação na região posterior do pigóforo. Parâmeros ausentes. Placa

basal ampla, mais larga que a phallotheca. Processus capitati robustos, conetivos dorsais

em forma de taça. Phallotheca pequena, representando menos da metade do comprimen-

to do phallus; presente 1 par de pequenos processos ventrais apicais digitiformes (pro-

cesso 1 da phallotheca) e 1 + 1 processos dorso-laterais (processo 2 da phallotheca)

junto à placa basal. Conjuntiva amplamente expandida, com 4 pares de processos, sendo

1 par ventral (processo 1 da conjuntiva), 1 par lateral (processo 2 da conjuntiva) e 2 pares

dorsais (processo 3 da conjuntiva, processo 4 da conjuntiva). Processo 3 da conjuntiva

muito esclerotinizado, em vista lateral assemelhando-se a um ““T”, quase completamente

encoberto pelos processos 1 e 2. Ápice dos processos da conjuntiva bastante

esclerotinizados, com exceção do par mais dorsal (processo 4 da conjuntiva), cujo ápice

apresenta-se suavemente arredondado e membranoso. Os processos 1, 2 e 3 da conjuntiva

envolvem a vesica ventro-lateralmente. Vesica com um processo em forma de gancho

(processo da vesica) curvado em direção ventral, parcialmente visível dorsal e lateral-

mente, totalmente encoberto pela conjuntiva em vista ventral. Ductus seminis distalis

longo, várias vezes maior que o phallus e disposto em helicóide.

Genitália 2 : gonocoxitos 8 moderadamente túmidos, ligeiramente mais largos que

longos, com a margem posterior sinuosa, biconvexa; bordos suturais unidos em toda a

sua extensão; ângulos suturais projetados sobre o gonoxito 9. Laterotergitos 8 mais lon-

gos que largos. Laterotergitos 9 mais longos que largos, não alcançando o ápice da banda

transversal que une os laterotergitos 8; margens internas dos laterotergitos 9 fortemente

sinuadas, as externas moderadamente convexas. Segmento X sub-retangular, mais longo

do que largo, margem posterior maior que a anterior.

Distribuição. Brasil: Pará, Rio Grande do Sul; Uruguai.

Comentários. O gênero Hypanthracos posiciona-se dentro do grupo de Pentatomini

denominado seção 1 (ROLSTON & McDONALD, 1984) por não apresentar tubérculo

ou espinho na base do 3º urosternito; assemelha-se superficialmente a Proxys Spinola,

1837 e Padaeus Stäl, 1862 pelo fácies dorsal, e a Tibraca Stäl, 1860 pela forma da cabe-

ça, disposição do clípeo e das jugas, estrutura do rostro, forma da carena do mesoterno,

presença de dois folhetos carenados no bordo ventral do pigóforo e presença de proces-

sos homólogos na phallotheca. Entretanto, Hypanthracos apresenta autapomorfias que

permitem distinguí-lo facilmente de outros gêneros, como a forma e proporção dos artí-

culos antenais, a forma do bordo dorsal do pigóforo, a ausência de parâmeros, a forma e

dimensão dos processos da conjuntiva.

Hypanthracos meridionalis, sp.n.

(Figs. 1, 3, 5-8, 13-15, 19, 21)

Holótipo: S , Uruguai, Artigas, 17.XI. 1955, F.H.C. leg. (MACN), aqui designado.

Descrição. Coloração de fundo ocre, grosseira e densamente pontuado de negro.

Cabeça: jugas com pontuações confluentes que formam rugas transversais. Antenas de

coloração ocre, porém negras nos 2/3 distais do 4º artículo, este desnsamente piloso; falta

o 5º artículo. Tarsos com três artículos (figs. 1, 3).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 13-19, 18 jun. 1996

16 GRAZIA & CAMPOS

a. Medidas: comprimento da cabeça 2,52; largura da cabeça 2,35; comprimento

dos artículos antenais 1 0,67, 11 0,50, III 0,68, IV 1,21, V falta; comprimento do pronoto

3,36; largura do pronoto ao nível dos ângulos umerais 7,22; comprimento do escutelo

5,04; largura basal do escutelo 4,20; largura abdominal ao nível do 3º segmento do conexivo

6,55: comprimento total, do ápice do clípeo ao ápice do 7º segmento do conexivo 13,61.

Genitália: pigóforo (figs. 5-8) de contorno subquadrangular, apresentando suave

estreitamento em direção a base; ângulos póstero-laterais arredondados e não projetados.

Segmento X (X) com superfície dorsal transversalmente sulcada e de contorno sinuado,

apresentando uma forte deflexão posterior (fig. 8); margem posterior de contorno

subtriangular. Phallus (figs. 13-15): processo 4 da conjuntiva (pcr4) rombo no ápice.

2 . Medidas. comprimento da cabeça 2,94; largura da cabeça 2,69; comprimento

dos artículos antenais I 0,76, II 0,50, III 1,93, IV 1,34, V falta; comprimento do pronoto

3,70; largura do pronoto ao nível dos ângulos umerais 8,23; comprimento do escutelo

6,47; largura basal do escutelo 5,04; largura abdominal ao nível do 3º segmento do conexivo

7,73; comprimento total, do ápice do clípeo ao ápice do 7° segmento do conexivo 15,29.

Genitália (figs. 19, 21): bordo posterior dos laterotergitos 9 (la8) projetando-se

conicamente além dos laterotergitos 9 (la9) em cerca de 1/3 do seu comprimento total.

Gonocoxito 9 (gc9) trapezoidal, mais largo que longo medianamente, margem posterior

com cerca da metade da largura da margem anterior. Braços do gonoxito 9 alcançando a

base dos laterotergitos 9. Genitália interna (fig. 21): esclerotinizações secundárias das

gonapófises 9 (esg) em forma semicircular, localizadas posteriormente às Chitinellipsen

(ch). Espessamento da íntima vaginal (eiv) de formato cônico. Ductus receptaculi (dr)

estreito e longo em relação à área vesicular; região anterior à área vesicular quase igual à

posterior, esta frouxamente enovelada. Pars intermedialis (pi) com o diâmetro menor

que o comprimento, cilíndrica, mais estreita que a capsula seminalis (cs), esta semiesférica

e destituída de dentes. Cristas anulares anterior (caa) e posterior (cap) conspícuas; crista

anular anterior voltada em direção ao ductus receptaculi.

Distribuição. Brasil: Rio Grande do Sul; Uruguai.

Material examinado. Parátipos: BRASIL. Rio Grande do Sul: Osório, Capão Alto, 1 9, 13.11.1965,

L.Buckup leg., nº 2854 (MCNZ); URUGUAI. Artigas: 19, 17.X1.1965 (AMNH); Potrero Sucio-Arroyo Tres

Cruces; 1d; 17.1.1955, EHYX €. leg: (UERG).

Hypanthracos ditarsus, sp.n.

(Figs. 2, 4, 9-12, 16-18, 20)

Holótipo: q , Brasil, Pará, Santarém, 4.V.1967, Exp. Perm. Armaz. (MZSP), aqui

designado.

Descrição. Coloração e pontuações como em H. meridionalis. Tarsos com dois

artículos (figs. 2,4 ).

S . Medidas: comprimento da cabeça 2,52; largura da cabeça 2,18; comprimento

dos artículos antenais I 0,67, II 0,50, III 1,68, IV 1,18, V 1,34; comprimento do pronoto

2,86; largura do pronoto ao nível dos ângulos umerais 7,06; comprimento do escutelo

4,20; largura basal do escutelo 3,70; largura abdominal ao nível do 3º segmento do conexivo

5,54; comprimento total, do ápice do clipeo ao ápice do 7° segmento do conexivo 12,60.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 13-19, 18 jun. 1996

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jun. 1996

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18 GRAZIA & CAMPOS

Figs. 3-21. Artículos tarsais, dorso-lateral: 3, H. meridionalis, sp. n.; 4, H. ditarsus, sp. n.; 5-8, H. meridionalis

‚sp. n.,O, pigóforo: 5, dorso-posterior; 6, ventral; 7, posterior; 8, segmento X, lateral. 9-12, A. ditarsus, sp. n.,

S , pigöforo: 9, dorso-posterior; 10, ventral; 11, posterior; 12, segmento X, lateral (bd, bordo dorsal; febv

folheto externo do bordo ventral; fibv, folheto interno do bordo ventral; X, segmento X). Placas genitais, 9,

ventral: 19, H. meridionalis, sp. n.; 20, H. ditarsus, sp. n.; 21, H. meridionalis, sp. n., 9, placas genitais,

receptaculum seminis e Ausenwand, ventral (caa, crista anular anterior; cap, crista anular posterior; ch,

chitinellipsen; cs, capsula seminalis; dr, ductus receptaculi; eiv, espessamento da íntima vaginal; es, espiráculo;

esg, espessamento secundário da gonapófise 9; g9, gonapöfise 9; gc8, gonocoxito 8; gc9, gonocoxito 9; laß,

laterotergico 8; la9, laterotergito 9; or, orificium receptaculi; pi, pars intermedialis; VII, 7º urosternito; X,

segmento X). Figs. 13-18; 19-20; 21 respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 13-19, 18 jun. 1996

Hypanthracos, um novo gênero de Pentatomini... 19

Genitália: pigóforo (figs. 9-12): muito semelhante ao de H. meridionalis, porém de

contorno subquadrangular, não estreitado em direção à base; escavação posterior entre os

folhetos do bordo ventral ligeiramente mais ampla; segmento X (X) com superfície dorsal

quase uniformemente convexa, margem posterior de contorno subtriangular (fig. 12).

Phallus (figs. 16-18): processos ventrais da phallotheca (prph1) curtos. Processo 4 da

conjuntiva (prc4) agudo no ápice. Processo 3 da conjuntiva (prc3), em vista lateral com

os braços do ““T” mais estreitos em comparação a H. meridionalis (figs. 15, 18).

S . Medidas: comprimento da cabeça 2,69; largura da cabeça 2,27; comprimento

dos artículos antenais I 0,84, II 0,67, HI 2,02, IV 1,34, V 1,34; comprimento do pronoto

3,70; largura do pronoto ao nível dos ângulos umerais 8,23; comprimento do escutelo

5,38; largura do escutelo 4,54; largura abdominal ao nível do 3º segmento do conexivo

7,06; comprimento total, do ápice do clípeo ao ápice do 7° segmento do conexivo 15,12.

Genitália (fig. 20): bordo posterior dos laterotergitos 8 (la8) desenvolvidos em pro-

jecäo aculeiforme de comprimento igual a pelo menos a metade do comprimento total

dos laterotergitos. Laterotergitos 9 (la9) com a margem lateral externa ligeiramente rugo-

sa. Genitália interna não examinada por tratar-se de exemplar único.

Material examinado. Parätipo: BRASIL. Pará: Almeirim, São Raimundo, 1 9, 31.X.1980, Everardo

Vogel col., “collected on rice” (AMNH).

Comentários. H. ditarsus distingue-se de H. meridionalis principalmente pelos

caracteres de genitália de fêmea e macho, além dos tarsos dímeros, uma característica

singular, rara entre pentatomíneos. Esta característica pode ser devida a um fenômeno de

neotenia, onde o adulto conservaria os dois artículos tarsais presentes nas ninfas, não

desenvolvendo o terceiro. Entretanto, o esclarecimento deste fato será possível somente

através de estudos de ontogenia da espécie.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

DUPUIS, C. 1955. Les génitalia des Hérmiptêres-Héteroptêres (Génitalia externes des deux sexes, voies

ectodermiques femelles). Mém. Mus. natn. Hist. nat., Paris, Paris, (A) (Nouvelle Série) 6(4): 183-278.

— . 1970. Heteroptera. In: TUXEN, S. L. ed. Taxonomist's Glossary of Genitalia of Insects. Munksgaard-

Copenhagen. p. 190-208.

GRAZIA, J.; CAMPOS, L.A. & BECKER, M. 1993. Revisão do Gênero Evoplitus Amyot & Seville (Heteroptera,

Pentatomidae, Pentatomini). Revta bras. Ent.,São Paulo, 37(1): 41-48.

ROLSTON, L.H. & McDONALD, F.J.D. 1984. A conspectus of Pentatomini of the Western Hemisphere. Part

3 (Hemiptera: Pentatomidae). JIN. Y. ent. Soc., New York, 92(1):69-86.

Recebido em 13.09.1994: aceito em 27.01.1995

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 13-19, 18 jun. 1996

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NOTAS SOBRE A BIOLOGIA DE DYSITHAMNUS XANTHOPTERUS

(BURMEISTER, 1857) (AVES, FORMICARIIDAE)

Giovannini Luigi!

Marcos André Raposo!

Inge Marianne Schloemp'

ABSTRACT

NOTES ON THE BIOLOGY OF DYSITHAMNUS XANTHOPTERUS (BURMEISTER, 1857) (AVES,

FORMICARIIDAE). The Rufous-backed Antvireo, Dysithamnus xanthopterus, is recorded from the highland

forests of coastal Rio de Janeiro, Säo Paulo and Paranä, Brazil. The nest of the species is a cup of thin fibers

lined by a thick layer of moss enhancing its disguise in the environment. The clutch consists of two white eggs

stripped and spotted of violaceus and brown especially in the larger end. Nest and eggs are quite similar to

those of Dysithamnus mentalis (Temminck, 1823), acommon Formicariidae in South America that can be

found side by side with D. xanthopterus in several localities.

KEYWORDS. Aves, Formicariidae, Dysithamnus xanthopterus, biology, nidification.

INTRODUCAO

Assinalada no Rio de Janeiro, São Paulo e Paraná, Dysithamnus xanthopterus

(Burmeister, 1857) apresenta distribuição restrita a Serra do Mar, ocupando o sub-bosque

de matas primärias e secundärias acima de 700m de altitude. Trata-se de um pässaro

comum e bastante conspicuo, mas precariamente representado em colecöes zoolögicas,

cuja biologia permanece desconhecida. Durante os ültimos anos, tivemos a oportunidade

de reunir diversas informações inéditas sobre a espécie, entre as quais destaca-se a descrição

do ninho e ovos desse Formicariidae.

MATERIAL E MÉTODOS

Os trabalhos de campo foram desenvolvidos em matas da região serrana ddo nterior do Estado do Rio

de Janeiro, Brasil, nos municípios de Santa Maria Madalena (21° 57' S, 42º 01' W), Nova Friburgo (22º 16' S,

42º 31 W) e Teresópolis (22º 27' S, 42º 56 W) em altitudes que variaram de 700 a 1600m. As observações

foram executadas com o auxílio de binóculos de campo Pentax 8x50 e Europa 10x50. Na mensuração dos

espécimes depositados nas coleções ornitológicas do Museu Nacional, Rio de Janeiro (MNRJ), Museu de

Zoologia, Universidade de São Paulo (MZSP) e do American Museum of Natural History, New York (AMNH),

utilizamos paquímetro milimetrado Mitutoyo com precisão de 0,05mm, sendo que as medidas de asa e cauda

foram tomadas segundo SICK (1985). Os pesos foram obtidos através de balanças Pesola com capacidade de

5, 10 e 50g, com precisão de 0,5g. A nomenclatura e segiiência dos nomes científicos seguem MEYER-DE-

1, Seção de Ornitologia, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro. Quinta da Boa Vista, CEP 20940-040,

Rio de Janeiro, RJ, Brasil

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 21-26, 18 jun. 1996

, LUIGI, RAPOSO & SCHLOEMP

SCHAUENSEE (1970).

Material examinado. BRASIL. Rio de Janeiro: Nova Friburgo: 6 S [MNRJ 35182 (02.VI11.1987),

35981 (04.V111.1988), 37486 (27.1V.1991), 38551 (28.VI1.1992), 38554 (30.VII.1992); MZSP 7892 (X.1909)],

3 2 [MNRJ 35920 (16.1V.1988), 38552 (28.V11.1992), 38555 (30.VI1.1992)]; Teresópolis: 6 S [MNRJ 16830

(20.IX.1929), 16831 (20.1X.1929), 28120 (24.VTII.1942), 36243 (17.1.1949), 37207 (28.X.1990); MZSP 33378

(25.VI11.1942)], 2? [MNRJ 16833 (20.1X.1929), 27952 (25.VI1.1942)]; Petrópolis: 1S (jovem) [MNRJ 16829

(06.111.1923)]; Serra de Itatiaia: 5 S [MZSP 36343 (22.1.1954), 36344 (25.1.1954), 36345 (28.1.1954); AMNH

189011 (23.11.1922), 189012 (03.1V.1922)], 2 2 [MZSP 36346 (28.1.1954); AMNH 189013 (03.1V.1922)];

Rio de Janeiro: 1? [AMNH 156324 (não datado)]. São Paulo: Serra da Bocaina: 25 [MNRJ 38823 (20.1.1978);

MZSP 26973 (27.VI11.1941), 29190 (30.VII.1941)]; Bananal: 7 S [MNRJ 21091 (17.VII.1940), 21096 (jo-

vem) (06.11.1941), 25865 (12.11.1941), 25787 (22.V1]1.1940), 25880 (22.11.1941), 26425 (08.V.1940), 38822

(12.1X.1940)], 1 9 [MNRJ 26518 (14.V.1940)]; Estação Engenheiro Ferraz: 1 9 [MZSP 56812 (05.1X.1964)];

Estação Biológica de Boracéia: 1 S [MZSP 33967 (30.X1.1948)], 1 ? [MZSP 52082 (12.1X.1963)]; Alto da

Serra: 2 O [MZSP 418 (12.VII. 1899), 49872 (18.V1.1962)], 1 9 [MZSP 419 (11.VIII.1899)]. Paraná: Corvo:

I C [MNRJ 16832 (30.1V.1928)], 4 2 [MNRJ 38932 (05.1V.1990), 38933 (05.1V.1990); AMNH 318478

(10.11.1930), 318481 (18.11.1930)], 1 não sexado [AMNH 318479 (10.11.1930)].

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Morfologia. Os sexos de D. xanthopterus distinguem-se sobretudo pela tonalidade

mais apagada da plumagem da fêmea e pelo colorido do píleo, castanho-avermelhado

nessa última e cinza no macho. O exame do material evidenciou a pouca variabiliade da

coloração desses Formicariidae, notando-se apenas diferenças na intensidade das cores

segundo a abrasão das penas. Indivíduos jovens oriundos do Estado do Rio de Janeiro

assemelham-se à fêmeas adultas, sendo que os machos possuem o alto da cabeça casta-

nho-avermelhado e abdômen lavado de ocráceo. O píleo parece ser uma das últimas

partes do corpo a perder os vestígios da plumagem juvenil, conforme demonstra um

exemplar obtido em Petrópolis, RJ (MNRJ 16829), que ostenta um colorido muito seme-

lhante aquele dos machos adultos, exceto pelo alto da cabeça cinza ardósia, entremeado

por algumas poucas penas de coloração castanha. Machos e fêmeas recém capturados

apresentam a maxila anegrada, a mandíbula cinza-azulado intenso e o tarso cinza-plúm-

beo com a planta do pé ocrácea. Jovens e adultos de ambos os sexos possuem a íris

marrom-escuro. Em média, as medidas tomadas de ambos os sexos são muito semelhan-

tes (tab. 1).

Distribuição geográfica. A área de ocorrência conhecida para D. xanthopterus

abrange os estados do Rio de Janeiro, São Paulo e Paraná (MEYER-DE-SCHAUENSEE,

Tabela I. Pesos (g) e medidas (mm) de Dysithamnus xanthopterus (x = média; s = desvio padrão; n = número total

de indivíduos).

e! 9

É intervalo n x S intervalo n q S

ASA 53,0-64,0 25 61,18 2.33 58,0-64,0 18 60,57 1,38

CAUDA 50,0-62,0 25 53.21 0,35 50,0-54,7 18 52,14 1,45

CULMEN 13,0-15,5 24 14,26 0,73 13,2-15,5 16 14,28 0,66

METATARSO 19,5-22,8 23 21,06 0,85 19,6-22,0 13 21,08 0,67

PESO 13,0-18,5 6 16,23 1,81 14,8-19,0 5 17,02 1,65

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):21-26 , 18 jun. 1996

Notas sobre a biologia de Dysithamnus xanthopterus... 23

1970; SICK, 1985), sendo delimitada por algumas poucas localidades da porção mais

litorânea da Serra do Mar (fig. 1), desde o Parque Estadual do Desengano, em Santa

Maria Madalena, RJ, até o município de Quatro Barras, no Paraná. Os poucos registros

disponíveis indicam tratar-se de um formicárida de distribuição estritamente serrana do

sudeste brasileiro, ocorrendo em altitudes acima de 700m (HOLT, 1928; WILLIS & ONIKI,

1981: SCOTT & BROOKE, 1985; HÖFLING & LENCIONI, 1992). Nesse sentido, cre-

mos que a procedência do exemplar MZSP 56812 - uma antiga estação ferroviária próxi-

ma a São Vicente, no litoral de São Paulo - deva ser considerada com reservas, desde que

pode tratar-se de mais um caso de rotulagem duvidosa de aves colecionadas por A. Ollala

(PINTO, 1945: 309).

A vegetação predominante nessa região corresponde à Floresta Ombrófila

Densa Montana, que se encontra restrita atualmente a áreas de acentuada declividade

(500 a 1500m), cuja precipitação anual oscila entre 2000 e 4500mm. Não são registrados

meses secos, muito embora ocorra um declínio sensível das chuvas durante o inverno

(NIMER, 1989).

A maior parte das atividades de campo foi concentrada nas serras dos Órgãos

(Nova Friburgo e Teresópolis) e Desengano (Santa Maria Madalena), situadas respecti-

vamente no centro e centro-norte do Rio de Janeiro. Correspondendo ao limite setentrio-

nal da serra do Mar, estas áreas abrigam tanto remanescentes florestais na forma de uni-

dades de conservação como diversos outros fragmentos pouco alterados em terrenos de

difícil acesso, como vales estreitos e encostas íngremes. Entretanto, D. xanthopterus foi

observada com maior frequência em matas primárias e capoeirões antigos, estando au-

sente em pequenas capoeiras e florestas muito degradadas.

As formações secundárias, onde a espécie foi assinalada, quase sempre en-

contram-se conectadas à áreas de vegetação primária ou menos alteradas. De um modo

geral, tais remanescentes apresentam um dossel em torno de 15m de altura, poucas emer-

gentes, interior úmido, grande quantidade de epífitas e por vezes sub-bosque muito cerra-

do. Ainda pode ser encontrada nas matas de altitude propriamente ditas, bem como na

borda dos campos altimontanos, cujo interior por vezes é ocupado em grande parte por

moitas de Chusquea sp. (Gramineae).

Hábitos e vocalizações. Dysithamnus xanthopterus frequenta desde o estra-

to herbáceo até a base das copas, embora seja usualmente observada a média e baixa

alturas. Seus deslocamentos são efetuados em geral na periferia de arbustos até as extre-

midades mais finas da ramaria e ao longo de cipós e lianas, que amiúde são utilizados

como ponte entre os diversos níveis da vegetação. Os bandos familiares movimentam-se

de forma um tanto lenta, uma vez que os indivíduos gastam tempo considerável em pon-

tos onde encontram alimento. Movimentos mais vivazes foram registrados apenas em

situações de alarme, quando a aparição de um predador [por exemplo, um Accipitridae

(Falconiformes) não identificado] ocasionava a rápida fuga e todos os indivíduos pelo

interior dos arbustos. Nessas situações, as aves mantinham as penas do pescoço e píleo

eriçadas e as asas ligeiramente afastadas do corpo e algo derreadas. No que se efere à

dissimulação do ninho estudado, observamos que o macho, que incubava os ovos em

janeiro de 1989, veio a executar uma série de curtos saltos pela vegetação próxima do

solo, proferindo ao mesmo tempo uma vocalização pouco audível “t-sí,t-sí,t-sí...”.

A captura de presas é efetuada na superfície de folhas, ramos ou entre os acúmulos

de matéria vegetal morta, depositada sobre a base de gravatás, galhos e interstícios da

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 21-26, 18 jun. 1996

24 LUIGI; RAPOSO & SCHLOEMP

vegetação, que são investigados às custas de muito ruído. Quando perseguem um inseto

que alce vôo, realizam por vezes vôos rápidos e retilíneos ou mesmo “loopings” elabora-

dos, ainda que movimentos bruscos não sejam usuais no quotidiano da espécie. Em se

tratando de presas de maior tamanho, alguns indivíduos procuram nocauteá-las através

de estocadas vigorosas contra ramos antes de ingerí-las. Segundo a análise do conteúdo

estomacal de 9 exemplares, a dieta de D. xanthopterus inclui grande variedade de adultos

e larvas de insetos, tais como Diptera, Lepidoptera e Coleoptera. Muito embora tenha

sido encontrada abundante quantidade de alimento em tal amostra, seu alto grau de

maceração não permitiu qualquer identificação mais precisa.

Ainda que muito peculiares, as vocalizações de D. xanthopterus são, via de regra,

pouco conspícuas, excetuando-se o canto que SICK (1985) descreve como sendo uma

“sequência descendente de assovios fortes”. O chamado consiste de um grave “chóirrmn”,

que pode ser emitido com insistência por indivíduos que estejam movimentando-se na

base de copas ou no alto do estrato médio. A coesão do grupo é mantida graças à emissão

contínua de uma melodiosa e monótona estrofe de notas discretas “fíiu - fíiu - fíju...”,

associada a uma voz curta e ascendente menos característica ouvida a intervalos irregula-

res (“drróinn”). Tais vocalizações foram detectadas sobretudo quando grupos da espécie

percorriam ativamente a ramaria em busca de alimento.

D. xanthopterus amiúde integra bandos mistos compostos tanto de furnáridas e

formicáridas encontrados no sub-bosque, como de tráupidas e fringílidas assinalados em

copas mais elevadas. Este elenco inclui 22 espécies, a saber: Sittasomus griseicapillus

(Vieillot, 1818), Lepidocolaptes fuscus (Vieillot, 1818), Cranioleuca pallida (Wied, 1831),

Syndactila rufosuperciliata (Lafresnaye, 1832), Anabacerthia amaurotis (Temminck,

1823), Philydor rufus (Vieillot, 1818), Cichlocolaptes leucophrys (Jardine & Selby, 1830),

Xenops rutilans Temminck 1821, Thamnophilus caerulescens Vieillot, 1816, Dysithamnus

stictothorax (Temminck, 1823), D. mentalis (Temminck, 1823), Drymophila ferruginea

(Temminck, 1822), Phylloscartes ventralis (Temminck, 1824), Leptopogon

amaurocephalus Tschudi, 1846, Platycichla flavipes (Vieillot, 1818), Cyclarhis gujanensis

(Gmelin, 1789), Hylophilus poicilotis Temminck, 1822, Basileuterus culicivorus

(Liechtenstein, 1830), B. leucoblepharus (Vieillot, 1817), Euphonia chalybea (Mikan,

1825), Tangara desmaresti (Vieillot, 1819) e Trichothraupis melanops (Vieillot, 1818).

D. xanthopterus não foi observada seguindo correições de formigas, embora haja regis-

tros nesse sentido para D. mentalis e D. puncticeps Salvin, 1866, as quais foram eventu-

almente observadas junto à correições de Eciton burchelli (Westwood, 1858) e Labidus

praedator (Fr. Smith, 1858) (Formicidae) (WILLIS, 1984).

Reprodução. O tamanho das gônadas de 10 exemplares examinados, assim como

várias observações de campo, indicam que a reprodução de D. xanthopterus no Rio de

Janeiro tem início em setembro, podendo perdurar até janeiro e fevereiro. Este período

coincide com a chegada da estação chuvosa na região, que alcança seus valores máximos

em janeiro (NIMER, 1989). A presença de casais foi observada ao longo de grande parte

do ano, ao passo que bandos compostos de adultos e filhotes com até seis indivíduos

eram mais comuns a partir dos meses de fevereiro e março até agosto.

Durante os trabalhos de campo, em 17 de janeiro de 1989, na serra do Subaio,

Teresópolis, localizamos um casal aninhando no interior de uma mata alta de sub-bosque

muito aberto e solo parcialmente encharcado pelas chuvas diárias que ocorriam no perí-

odo. O ninho, que se encontrava fixado a uma forquilha a 1,80m do solo, consistia em

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):21-26 , 18 jun. 1996

Notas sobre a biologia de Dysithamnus xanthopterus... 25

uma pequena cesta de 80mm de diâmetro e 60mm de altura. Sua câmara incubatória era

composta por denso emaranhado de radículas alongadas, pecíolos de Gramineae e sobre-

tudo longos filamentos ressequidos de Tyllandsia usneoides(L.)L. (Bromeliaceae) (fig.

2), medindo, na altura das bordas, 530mm de profundidade e 55mm de diâmetro (fig. 3).

As paredes do ninho apresentavam a superfície externa coberta por uma espessa camada

(

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Figs. 1 - 3. Disithamnus xanthopterus (Burmeister, 1857). 1, Distribuição na região sudeste do Brasil: (1) Santa

Maria Madalena; (2) Nova Friburgo; (3) Teresópolis; (4) Petrópolis; (5) serra do Tinguá, Nova Iguaçu: (6)

serra de Itatiaia; (7) Bananal; (8) serra da Bocaina; (9) Campos do Jordão; (10) Salesópolis; (11) Estação

Ecológica de Boracéia, Mogi das Cruzes; (12) Alto da Serra; (13) Estação Engenheiro Ferraz; (14) Reserva

Estadual de Carlos Botelho, serra de Paranapiacaba; (15) Caratuva; (16) Campina Grande do Sul; (17) Corvo,

Quatro Barras; 2, aspecto geral do ninho; 3, esquema de corte sagital do ninho.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 21-26, 18 jun. 1996

26 LUIGI; RAPOSO & SCHLOEMP

de musgos e hepáticas, que se prolongavam sob a forma de filamentos pendentes e irre-

gulares com mais de 60mm de comprimento. Devido à sua abundância nos arbustos

vizinhos, estes ítens poderiam ter sido retirados do próprio local, a exemplo do que foi

observado por EULER (1900) para um caso de nidificação de D. mentalis. Entremeados

na camada externa de musgos, foram encontrados outros tipos de materiais como folhas

secas de Chusquea (Gramineae) e ootecas de aranhas de coloração brancacenta, localiza-

das em sua maior parte nas proximidades dos pontos de fixação do ninho à forquilha.

Segundo LILL & FRENCH (1969) e BOSSO et al. (1988), ninhos de D. mentalis,

registrados respectivamente em Trinidad-Tobago e na Argentina, também incluiam ootecas

de aranha em sua estrutura, além dos materiais básicos encontrados no ninho de D.

xanthopterus.

Os dois ovos que compunham a postura estavam sendo incubados por um

macho (MNRJ 36243) e apresentavam embrionamento incipiente. Sua casca, extrema-

mente fina e lisa, possuia um colorido creme claro, algo fosco, sendo marchetada de

pequenas manchas e riscos marrom-vináceos sobretudo ao redor do pólo rombo. Um dos

ovos mediu 19,25 x 15,60mm, enquanto que o segundo foi partido durante o manuseio.

O peso médio obtido foi de 2,78g. Estes ovos assemelhavam-se em muito àqueles descri-

tos por EULER (1900) para D. mentalis.

Agradecimentos. Aos professores do Museu Nacional do Rio de Janeiro Jorge B. Nacinovic, pela

revisão do texto em inglês, e Dante Martins Teixeira, pelas sugestões e revisão do manuscrito. Aos Srs. Marcos

Bornschein e Fernando Straube, do Museu de História Natural Capão da Imbuia, Curitiba, pelas sugestões e

acréscimo de dados. Ao Prof. Hélio Camargo, do Museu de Zoologia da Universidade de São Paulo, pelos

esclarecimentos fornecidos sobre tópicos do trabalho. Aos curadores do American Museum of Natural History,

New York, pelo auxílio prestado em nossas consultas ao acervo ornitológico.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BOSSO, A.; HEINONEN, S. & CHEBEZ, J.C. 1988. Un nuevo hallazgo del nido del Burajara Comum

(Dysithamnus mentalis) (Passeriformes: Formicariidae). Hornero, Buenos Aires, 13: 89.

EULER, €. 1900. Descripção de ninhos e ovos das aves do Brasil. Revta Mus. paul. S. Paulo, São Paulo, 4:

9-148.

HÖFLING, E. & LENCIONI, F. 1992. Avifauna da Floresta Atlântica, região de Salesópolis, Estado de São

Paulo. Revta bras. Biol., Rio de Janeiro, 52 (3): 361-378.

HOLT, E.G. 1928. An ornithological survey of the serra do Itatiaia, Brazil. Bull. Am. Mus. nat. Hist., New

York, 57: 251-326.

LILL, A. & FRENCH, R.P. 1969. Nesting of the Plain Antvireo Dysithamnus mentalis andrei in Trinidad, West

Indies. Ibis, London, 112: 201-202.

MEYER-DE-SCHAUENSEE, R. 1970. A guide to the birds of South America. Philadelphia, Academy of

Natural Sciences of Filadelphia. 470p.

NIMER, E. 1989. Climatologia do Brasil. Rio de Janeiro, Departamento de Recursos Naturais e Estudos

Ambientais, IBGE, 560p.

PINTO, O.M.O. 1945. Cingüenta anos de investigação ornitológica. História das origens e do desenvolvimen-

to da coleção ornitológica e de seu subsequente progresso no Departamento de Zoologia da Secretaria da

Agricultura. Arq. Zool. Est. de S. Paulo, São Paulo, 4: 1-80.

SCOTT, D.A. & BROOKE, M. de L. 1985. The endangered avifauna of southeastern Brazil: a report on the

BOU/WWF expeditions of 1980/81 and 1981/82. In: DIAMOND, A.W. & LOVEJOY, T.W. (orgs.).

Conservation of tropical forests birds. Cambridge. International Council of Bird Preservation. (Tech.

Publ. 4). p. 115-139.

SICK, H. 1985. Ornitologia brasileira, uma introdução. Brasília, Ed. Universidade de Brasília. 827 p.

WILLIS, E.O. 1984. Dysithamnus and Thamnomanes (Aves, Formicariidae) as army ant followers. Papéis

Avuls. Zool., São Paulo, 35 (18): 183-7.

WILLIS, E.O. & ONIKI, Y. 1981. Levantamento preliminar de aves em treze áreas do Estado de São Paulo.

Revta bras. Biol., Rio de Janeiro, 4 (1): 121-35.

Recebido em 02.08.1994; aceito em 30.12.1994.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):21-26 , 18 jun. 1996

METODOLOGÍA PARA LA CUANTIFICACIÓN DE ALGUNAS

ESTRUCTURAS TAXONOMICAS EN ACTINIARIA

(CNIDARIA, ANTHOZOA)

Fabian H. Acuha!”

Mauricio O. Zamponi!é

Carlos D. Pérez!

ABSTRACT

METHODOLOGY FOR THE QUANTIFICATION OF SOME TAXONOMIC STRUCTURES IN

ACTINIARIA (CNIDARIA,ANTHOZOA). New method for a quantitative analysis of the vesicles and verrucae

is proposed. The method consists to apply the formule: N = C x Vc; where N = total number of vesicles /

verrucae; C = total number of columns and Vc = total number of vesicles / verrucae for each column. This

method is valid statistically and it allows to reduce the time employed in taxonomical and ecological studies.

KEYWORDS. Methodology, vesicles, verrucae, Actiniaria.

INTRODUCCIÓN

La identificaciön de la mayoria de los géneros de Actiniidae depende de la definición

y evaluación taxonómica de las diferentes estructuras en forma de verruga y vesícula que

se hallan en la superficie de la columna (RIEMANN-ZURNECK & GALLARDO, 1990).

Las primeras definiciones sobre dichas estructuras fueron dadas por STEPHENSON (1928)

y su validez se mantiene a través de los afios, aunque diversos autores tales como HARTOG

(1987) y ENGLAND (1987) consideran que los términos verruga y vesícula deben ser

utilizados en un sentido más estricto. Si bien las verrugas y vesículas constituyen estructuras

de alto valor diagnóstico, el recuento de las mismas resulta tedioso y difícil de realizar en

su totalidad debido a la gran cantidad que suelen presentar las diferentes especies. La

falta de antecedentes bibliográficos que permitan unificar criterios metodológicos para

su cuantificación ha hecho necessario desarrollar un método de estudio para facilitar la

rápida determinación del número total de estas estructuras. El método, ahora propuesto,

permitirá al especialista minimizar el esfuerzo y el tiempo, en estudios morfológicos

comparados, con un alto grado de exactitud.

1. Universidad Nacional de Mar del Plata (UNMdP) Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Depto. de Ciencias Marinas. Laboratorio de

Biología de Cnidarios. 7600, Mar del Plata, Argentina.

2. Becario del CONICET.

3. Investigador del CONICET.

4. Becario de la UNMdP.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 27-31, 18 jun. 1996

28 ACUNA; ZAMPONI & PEREZ

MATERIAL Y METODOS

Las especies utilizadas para este estudio fueron Phymactis clematis Dana, 1849 (caracterizada por

poseer vesiculas); Aulactinia reynaudi (Milne - Edwards, 1857) y A. marplatensis (Zamponi, 1977) (caracteri-

zadas por poseer verrugas), pertenecientes a la familia Actiniidae. El material empleado procede del piso

mesolitoral del sistema intermareal (segün PERES, 1961) de Punta Cantera (38°05’S,57°32’W) y Santa Clara

del Mar (37º50'8,57º30'W), Provincia de Buenos Aires, Argentina. La recolecciön de los ejemplares fue reali-

zada con una periodicidad mensual en ambas zonas desde Septiembre de 1991 a Mayo de 1992. Los ejemplares

fueron fijados “in situ” en solución marina de formaldehido neutralizado al 7% para su posterior estudio en

laboratorio y fueron depositados en Laboratorio de Biologia de Cnidaria, Departamento de Ciencias Marinas,

Universidad Nacional de Mar del Plata.

Cada ejamplar fue sometido a los dos siguientes métodos de cuantificación: 1) recuento total de vesículas

y verrugas por observación directa bajo microscopio estereoscópico; 2) estimación del número total de vesículas

y verrugas utilizando el siguiente procedimiento: a) corte longitudinal del ejemplar; b) recuento de vesículas y

verrugas localizadas en la sección periférica del corte (fig. 1), obteniéndose el número total de vesículas y

verrugas por columna (Vc); c) recuento del número total de columnas de las dos secciones del ejemplar, para

obtener el número total de columnas del individuo (C) (fig. 2).

CD COLUNMNA DE

VESICULAS /

VFRRUGAS

)

COLUMNAS DE VESICULAS/ VERRUGAS

Figs. 1-2. Esquema de un ejemplar de Actiniidae, sección longitudinal: 1, número total de vesículas / verrugas

por columna (modificado de MANUEL, 1981); 2, número total de columnas (modificado de ENGLAND,

1987).

En base a lo explicitado se puede estimar el número total de vesículas o verrugas (N) del ejemplar

analizado con la fórmula siguiente: N = € x Vc. Los datos obtenidos por los métodos 1 y 2 fueron comparados

estadisticamente mediante el Test de Medidas Repetidas con un nivel de significación de o = 0,01 y o =0,001

(winner, 1971), a fin de demostrar que la estimación propuesta es estadisticamente válida. Para la realización

delí Test de Medidas Repetidas se calculó d (promedio de las diferencias entre los valores obtenidos por cada

método) y sd (desvio standard de d).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 27-31,18 jun. 1996

Metodologia para la cuantificación... 29

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

El método implementado es de fácil realización y los resultados fueron

estadísticamente válidos (en todos los casos con 0=0,001 y en la mayoria de los casos

con 4=0,01). Observando los valores, y los resultados obtenidos del análisis estadístico

(tablas I-VI), se verificó la validez del estudio propuesto, ya que en la gran mayoria de los

casos comparados no hubo diferencias significativas entre ambos métodos. De los estudios

realizados en las tres especies analizadas se comprobó que la metodologia propuesta

resultó se de gran utilidad ya que ahorra tiempo y esfuerzo al especialista, y se cuenta con

resultados confiables, debido a que están sustentados estadísticamente.

Tabla I. Datos estadísticos obtenidos de la comparación de los métodos empleados para Phymactis clematis

Dana, 1849 de Punta Cantera, Argentina. (d, prometido de las diferencias; sd, desvio standard de d; NS= no

significativo; tobs= t observado). (ot =0,01).

MES/ANO INDIVÍDUOS d sd tobs Resultado

09/91 11 BD 334,00 1,31 NS

10/91 10 76,30 276,03 0,87 NS

11/91 10 133,20 293,02 1,44 NS

12/91 13 84,46 210,52 1,45 NS

01/92 10 50,50 Fol Sal 0,99 NS

02/92 10 58,50 310,66 0,59 NS

03/92 10 34,40 DATEN 0,48 NS

04/92 11 2,00 229,36 0,03 NS

05/92 12 pop) 207,30 0,47 NS

Tabla II. Datos estadísticos obtenidos de la comparación de los métodos empleados para Phymactis clematis

Dana, 1849 de la zona Santa Clara del Mar, Argentina, (or =0,01).

MES/ANO INDIVÍDUOS d sd tobs Resultado

09/91 7 201,71 250,02 2,13 NS

10/91 7 127,00 197,29 1,70 NS

11/91 10 102,70 121,38 2,68 NS

12/91 11 927 1299 0,23 NS

01/92 10 4830 116,92 1,31 NS

02/92 11 88,73 144,58 2,03 NS

03/92 10 136,60 143,68 3,01 NS

04/92 11 144,09 123,72 3,86 S

05/92 ih! 58,00 77,90 DAT] NS

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 27-31, 18 jun. 1996

30 ACUNA; ZAMPONI & PÉREZ

Tabla II. Datos estadísticos obtenidos de la comparación de los dos métodos empleados para Aulactinia reynaudi

(Milne-Edwards, 1857) de Punta Cantera, Argentina. (a =0,01).

MES/ANO INDIVÍDUOS d sd tobs Resultado

10/91 10 38,20 68,81 1,75 NS

11/91 [1 78,27 82,99 3,13 NS

12/91 10 33,80 48,94 2,18 NS

01/92 10 46,60 52,01 2,83 NS

02/92 11 9,82 65,21 0,50 NS

03/92 7 84,29 55,06 4,05 S

04/92 11 24,91 35,68 2,31 NS

05/92 7 64,00 40,23 A S

Tabla IV. Datos estadísticos obtenidos de la comparación de los dos métodos empleados para Aulactinia reynaudi

(Milne-Edwards, 1857) de la zona Santa Clara del Mar, Argentina. (a =0,01).

MES/ANO INDIVÍDUOS d sd tobs Resultado

09/91 6 DSO) 83,32 1765 NS

10/91 8 192,25 94,19 Sn S

11/91 10 43,00 66,51 2,04 NS

12/91 10 28,40 60,34 1,48 NS

01/92 10 14,40 22 0,48 NS

02/92 9 7,22 58,05 4,32 S

03/92 4 45,50 32.93 2,76 NS

04/92 10 44,80 32,80 4,32 S

05/92 10 22,10 2) 2.37 NS

Tabla V. Datos estadisticos obtenidos de la comparación de los dos métodos empleados para Aulactinia

marplatensis (Zamponi, 1977) de la zona Punta Cantera, Argentina. (o. =0,01).

MES/ANO INDIVIDUOS d sd tobs Resultado

09/91 6 120,67 200,56 1,47 NS

10/91 11 90,27 74,20 4,03 S

11/91 11 101,54 93,38 3,61 S

12/91 10 45,70 100,98 1,43 NS

01/92 | 10 86,60 49,78 5,51 S

02/92 10 51.20, 1039 1,46 NS

03/92 10 84,40 33,76 7,16 S

04/92 9 43,44 11,18 4,54 S

05/92 10 13,50 39,50 1,08 NS

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 27-31,18 jun. 1996

Metodologia para la cuantificación... ai

Tabla VI. Datos estadísticos obtenidos de la comparación de los dos métodos empleados para Aulactinia

marplatensis (Zamponi, 1977) de la zona Santa Clara del Mar, Argentina. (a =0,01).

MES/ANO INDIVÍDUOS d sd tobs Resultado

09/91 4 GTS IR 152 NS

10/91 8 69,00 92,21 242 NS

11/91 11 34,00 77,34 1,51 NS

12/91 10 62,30 48,86 4,03 S

01/92 10 74,80 66,89 3,54 S

02/92 10 81,70 67,64 3,82 S

03/92 10 50,90 45,91 3,50 S

04/92 10 10,90 36,11 0,95 NS

05/92 10 DO) DT 2,57 NS

Agradecimientos. Al laboratorio de Cartografia y Dibujo (UNMdP), por la confecciön de los dibujos

que ilustran el trabajo.

REFERENCIAS BIBLIOGRÄFICAS

ENGLAND,K.W. 1987. Certain Actiniaria (Cnidaria, Anthozoa) from the Red Sea and tropical Indo-Pacific

Ocean. Bull. Br. Mus. nat Hist. (Zool.), London, 53:205-292.

HARTOG, J.C. den. 1987. A redescription of the sea anemone Bunodosoma biscayensis (Fisher, 1974)

(Actiniaria, Actiniidae). Zoöl. Meded., Leiden, 61:533-559.

MANUEL, R.L. 1981. Mistish Anthozoa. Sinopsis of the British Fauna (New Ser.), London, Academic, v.18,

241p.

PERES, J.M. 1961. Oceanographic Biologique et biologie marine. I. La vie benthique. Paris, Universitaires,

514 p.

RIEMANN-ZÜRNECK, K. & GALLARDO, V.A. 1990. A new species of sea anemone Saccactis coliumensis

n. sp. living under hypoxic conditions on the central Chilean shelf. Helgolânder wiss. Meeresunters.,

Bremerhaven, 44: 445-457.

STEPHENSON, T.A. 1928. The British sea anemones. London, Ray Society. 148p.

WINNER, R.J. 1971. Statistical Principles in Experimental Design. New York, Mc Graw-Hill, 907 p.

Recebido em 19.04.1994; aceito em 07.02.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 27-31, 18 jun. 1996

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NOVA ESPÉCIE DE HYLA DO GRUPO MARMORATA DE SERGIPE, NOR-

DESTE DO BRASIL (AMPHIBIA, ANURA, HYLIDAE)

Marcia dos Reis Gomes!

Oswaldo Luiz Peixoto”

ABSTRACT

NEW SPECIES OF HYLA OF THE MARMORATA GROUP FROM SERGIPE, NORTHEASTERN

BRAZIL (AMPHIBIA, ANURA, HYLIDAE). Hyla dutrai n. sp., belonging to the marmorata group and

closely related to H. novaisi Bokermann, 1968, is described and illustrated from Areia Branca, State of Sergipe,

Brazil. The known range ofH. novaisi is extended to the State of Minas Gerais and that of 7. soaresi Caramaschi

& Jim, 1983 to the states of Ceará and Minas Gerais, Brazil.

KEYWORDS. Hyla, marmorata group, new species, northeastern Brazil.

INTRODUÇÃO

As espécies de Ayla Laurenti, 1768 reunidas no grupo marmorata apresentam ampla

e complexa distribuição na América do Sul e diversos autores (BOKERMANN, 1964;

HEYER, 1977; CARAMASCHI & JIM, 1983) têm apontado dificuldades quanto a deli-

mitação de suas espécies; em parte, esses problemas derivam de uma variabilidade

morfológica intra-específica também encontrada nas larvas (GOMES & PEIXOTO, 1991).

São assinaladas para o nordeste brasileiro apenas duas espécies do grupo, Hyla novaisi

Bokermann, 1968 e H. soaresi Caramaschi & Jim, 1983 (FROST, 1985). O exame de

exemplares do grupo marmorata, procedentes do nordeste, permitiu-nos descrever uma

nova espécie do grupo para Sergipe, e assinalar novas ocorrências para as espécies ante-

riormente conhecidas no semi-árido brasileiro.

MATERIAL E MÉTODOS

A descrição da membrana interdigital segue o proposto por SAVAGE & HEYER (1967); as mensurações

e parte dos termos descritivos de morfologia seguem HEYER et al. (1990); CRA abrevia comprimento rostro-

anal. As siglas denotam as seguintes coleções: JJ, coleção Jorge Jim, Universidade Estadual de São Paulo,

Campus de Botucatu; MNRJ, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro; MZSP,

Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, São Paulo; SPCS, coleção Sergio P. Carvalho e Silva, Depar-

1. Departamento de Zoologia, Instituto de Biologia, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Caixa Postal 68044; 21949-900 - Rio de Janeiro, RJ,

Brasil.

2. Departamento de Biologia Animal, Instituto de Biologia, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, 23851-970 Seropédica - Itaguaí, RJ.

Brasil. Pesquisador, CNPq.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 33 - 38, 18 jun. 1996

34 GOMES & PEIXOTO

tamento de Zoologia, Instituto de Biologia, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro; WCAB,

Coleção Werner Bokermann, São Paulo.

Exemplares examinados, Hyla novaisi: Brasil. Bahia: Maracás, WCAB 30722, 31752, 31753, 31760,

30724, 31748, 31750, 31755, parátipos, WCAB 31743, holótipo, WCAB 31744, alótipo; Boa Nova, SPCS

5252, 03.1x. 1992, L.A.P. Gonzaga; Minas Gerais: Pedra Azul, WCAB 40902, xii. 1971, W.C.A. Bokermann.

Hyla soaresi: Brasil. Piaui: Picos, MNRJ 14250, 14251, parätipos, (ex JJ 5749, 5750); Ceará: Santana

do Cariri SPCS 6081, 6082, 06.1.1980, O. L. Peixoto; Paraíba: Areia Branca, MZSP 63123, iv. 1983, M.

Rodrigues; Minas Gerais: Mangas, Mocambinho, EI 8788, 8790.

Hyla dutrai sp. n.

(Figs. 1, 3,5,7,9, 11, 12)

Tipos, Holótipo fêmea, adulta com ovos, Areia Branca, Estado de Sergipe, Brasil,

22-24. 1v. 1973, expedição Academia Brasileira de Ciências- Museu de Zoologia, MZSP

38025; alótipo, macho, colecionado com o holótipo, MZSP 38024.

Dimensões, mm, (alótipo entre parênteses). Comprimento rostro-anal: 38,1 (34,2);

comprimento da cabeça: 10,4 (10,2); largura da cabeça: 10,7 (10,7); mão: 10,4 (9,5);

comprimento fêmur-tibial: 33,4 (30,5); diâmetro do olho: 3,5 (3,3); diâmetro do tímpa-

no: 2,0 (2,2); pé: 14,8 (12,9).

Diagnose. Espécie do grupo marmorata, próxima de H. novaisi, distinguindo-se

pelo porte pouco maior; maior inclinação da prega supra-timpânica; focinho levemente

truncado; membranas interdigitais mais extensas; maior comprimento fêmur-tibial; e áreas

ocultas das coxas com faixas largas e irregulares.

Descrição (holótipo, fêmea). Porte médio, cabeça relativamente larga, comprimen-

to da cabeça equivalente à largura e representado cerca de três vezes no comprimento

rostro-anal; focinho relativamente alto, truncado em vista dorsal e lateral (figs. 1,3), can-

to rostral pouco marcado, loros escavados e inclinados; olhos grandes afastados entre si

por pouco mais que seu diâmetro; tímpano nítido, com diâmetro pouco superior ao disco

do terceiro dedo, prega supra timpânica grossa, bem marcada, em arco, cuja inclinação se

acentua após o tímpano, encobrindo parcialmente a borda superior do anel timpânico;

narinas situadas em pequenas projeções próximas à extremidade do focinho, ligeiramen-

te voltadas para o lado; língua arredondada, com pequeno entalhe nas bordas anterior e

posterior; dentes vomerianos (6-8) em duas séries retilíneas entre e próximos à borda

anterior das coanas; saco vocal e patágio grandes; antebraço com margem crenulada,

característico do grupo; mão equivalendo a 29% do CRA, membrana interdigital 12 - 21

l+- 2 W11 1/2 - 1+ IV; calos subarticulares bem marcados, sendo o segundo do quarto

dedo, bífido; comprimento fêmur-tibial equivalente ao comprimento rostro-anal, tíbia

menor que o fêmur, membrana interdigital 11 - 2-1 0-12/3H11-2-IV 12/3-OV; pele

do dorso pouco granulosa, do ventre bem granulosa, exceto na região do patágio; região

anal com grânulos bem desenvolvidos; calo metacarpal externo bífido e calo metacarpal

interno alongado, calos acessórios presentes, calos subarticulares nítidos, calo metatarsal

interno alongado, calo metatarsal externo arredondado, pouco evidente, calos acessórios

discretos, margem externa crenulada, do tarso até o quinto dedo, discos equivalentes aos

da mão; poucos grânulos na articulação tíbio-tarsal, uma prega crenulada muito curta na

face ventral do tarso, próxima à articulação com a tíbia.

Coloração em álcool 70%, holótipo. Dorso e superfícies dorsais dos membros, à

exceção das coxas, cinza-esbranquiçado, com manchas dispersas, como flocos negros;

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 33-38,18 jun. 1996

Nova espécie de Hyla... 35

barras transversais discretas, pardacentas, no tarso; coxas (fig. 9) cárneas com barras

largas, irregulares, marrom-enegrecidas, e, superiormente, com uma faixa mediana e lon-

gitudinal, esbranquiçada. Lados da cabeça cinza-esbranquiçados, com uma mancha par-

do-escurecida em frente aos olhos e outras duas, esmaecidas, em volta da narina e à

frente do tímpano, uma estreita faixa marrom-enegrecida originando-se próximo dos olhos

e se estendendo sobre a prega supra-timpânica. Flancos cinza-esbranquecidos, com uma

faixa transversal, no terço médio, esbranquiçada e margeada por uma linha negra; região

inguinal cárnea, com pequenas manchas pardo-escurecidas. Região gular, até a inserção

dos braços, esbranquiçada com pequenas manchas pardo-escurecidas na gula; ventre e

face ventral das coxas creme; demais superfícies ventrais cárneas.

Alótipo. Dorso pardo-esbranquiçado, mosqueado por manchas escuras, fimbriadas

de negro, lembrando troncos recobertos por líquens; dorso das coxas com barras trans-

versais; pardo-escuras, tendendo a confluir inferiormente e limitando áreas cárneas; dor-

so das tíbias com manchas pardas, fimbriadas de negro. Flancos com a faixa transversal

esbranquiçada ladeada por duas faixas pardo-escurecidas. Região gular com maior nú-

mero de manchas pardo-escuras do que o holótipo.

Etimologia. Patronímico atribuído à espécie é uma homenagem ao amigo e profes-

sor, José Alfredo Pinheiro Dutra, do Departartamento de Zoologia, do Instituto de Biolo-

gia da Universidade Federal do Rio de Janeiro.

Discussão. Hyla novaisi, H. dutraie H. soaresi formam, dentro do grupo marmorata,

um conjunto de espécies que ocorre no semi-árido brasileiro.

Hyla novaisi é registrada para o Estado da Bahia por FROST (1985), referindo-se,

provavelmente, apenas à localidade tipo. O material estudado permitiu-nos ampliar sua

distribuição para Boa Nova, no mesmo estado, e para Pedra Azul, Minas Gerais.

Hyla dutrai assemelha-se a H. novaisi não só pela coloração geral do dorso e do

ventre em álcool, como pela coloração das partes ocultas das coxas. Em H. novaisi o

padrão do dorso é um pouco mais ornamentado; no entanto, em alguns exemplares, o

dorso apresenta-se quase uniforme, apenas com pequenas manchas negras dispersas, como

no holótipo de H. dutrai. As partes ocultas das coxas, em exemplares fixados de ambas as

espécies (figs. 9, 10), apresentam faixas enegrecidas sobre fundo claro, sendo largas e

irregulares em MH. dutrai e como barras estreitas em H. novaisi. As duas espécies podem,

ainda, ser diferenciadas pelo maior porte de A. dutrai; pelo comprimento fêmur-tibial,

equivalente ao CRA em A. dutrai e representando cerca de 90% deste em H. novaisi;

pelo perfil do focinho; truncado em A. dutrai e arredondado em H. novaisi (fıgs. 1, 4);

pelos loros mais escavados e inclinados em H. dutrai; pelo maior diâmetro do tímpano na

fêmea de H. dutrai, o que ocorre nos machos de H. novaisi; pelos dentes vomerianos

mais longos e projetados em H. dutrai e em grupos de 6-8, sendo representados por 5-6

em H. novaisi; H. dutrai tem, anda, membranas interdigitais mais extensas (figs. 5, 6),

prega supra-timpânica mais curvada, narinas direcionadas pouco mais lateralmente, ca-

beça pouco mais larga, calo carpal externo situado mais posteriormente, calo carpal inter-

no mais alongado, calo tarsal externo mais discreto e localizado mais posteriormente

(figs. 7,8).

Hyla soaresi é assinalada para o estado do Piauí, onde foi registrada apenas em

Picos, a localidade-tipo; Jandaíra, Bahia (GOMES & PEIXOTO, 1991); Cabaceiras,

Paraíba (CASCON, 1987). O material examinado permite registrar a espécie para Santana

do Cariri, Ceará; Areia Branca, Paraíba; Mocambinho, município de Manga, Minas Ge-

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 33 - 38, 18 jun. 1996

36 GOMES & PEIXOTO

o A RS des —

Figs. 1 - 10. Hyla dutrai, sp. n., holótipo fêmea, cabeça: 1, vista lateral; 3, vista ventral; 5, mão, face palmar; 7,

pé, face plantar; 9, ornamentação da coxa; Hyla novaisi Bokermann, 1968, holótipo fêmea, cabeça: 2, vista

lateral, 4, vista dorsal; 6, mão, face palmar; 8, pé, face plantar; 10, ornamentação da coxa, (escalas, cabeça, 5

mm; mãos e pés, 6 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 33-38,18 jun. 1996

Nova espécie de Ayla... 37

Figs. 11 - 12. Hyla dutrai, sp.n., 11, holótipo, fêmea, vista dorsal, (comprimento rostro-anal 38,Imm); 12,

alótipo, macho, vista dorsal, (comprimento rostro-anal 34,2 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 33 - 38, 18 jun. 1996

| OO

GOMES & PEIXOTO

rais.

H. dutrai foi coletada próximo à área de distribuição conhecida para AH. soaresi,

espécie da qual pode ser facilmente diferenciada pelo maior porte; pela coloração das

partes ocultas das coxas, com barras irregulares enegrecidas sobre fundo claro em H.

dutrai e com manchas claras e arredondadas sobre fundo enegrecido em H. soaresi; pela

membrana interdigital mais extensa; pela cabeça mais larga; pelo focinho pouco mais

truncado; pela fêmea apresentar tímpano maior que o macho; pelo comprimento fêmur-

tibial ser equivalente ao CRA, enquanto que em H. soaresi equivale a pouco menos de

90% deste.

Agradecimentos.A Paulo Emilio Vanzolini, MZSP; Werner C.A. Bokermann, Fundação Parque Zoo-

lógico de São Paulo; Ulisses Caramaschi, MNRJ; Sergio P. Carvalho e Silva, Instituto de Biologia, Universida-

de Federal do Rio de Janeiro (UFRJ), pelo acesso ao material examinado. Ao Dr. Bokermann, por suas suges-

tões e informações. Ao Prof. Luiz A. P. Gonzaga, UFRJ, pelo material coletado em Boa Nova, Bahia e leitura

do manuscrito. Ao Dr. Eugenio Izecksohn, da Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, pela leitura do

manuscrito.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BOKERMANN, W. C. A. 1964. Notes on tree frogs of the marmorata group with description of a new species

(Amphibia, Hylidae). Senckenberg. biol., Frankfurt am Main, 45(3/5) : 243-254.

CARAMASCHI, U. & JIM, J. 1983. Uma nova espécie de Hyla do grupo marmorata do nordeste brasileiro

(Amphibia, Anura, Hylidae). Revta bras. Biol., Rio de Janeiro, 13 (2): 195 - 198.

CASCON, P. 1987. Observações sobre a diversidade, ecologia e reprodução da anuro-fauna de uma área da

caatinga. 64 p, João Pessoa, Tese de Mestrado em Ecologia, Departamento de Sistemática e Ecologia,

UFPb. (Não Publicada).

FROST, D. R. 1985. Amphibian species of the world, a taxonomic and geographic reference. Lawrence,

Kansas, Allen & The Association of Sistematic Collections, 732p.

GOMES, M. R. & PEIXOTO, O. L. 1991. Considerações sobre os girinos de Hyla senicula (Cope, 1868) e

Hyla soaresi Caramaschi & Jim, 1983 (Amphibia, Anura, Hylidae). Acta biol. Leopoldensia, São Leopoldo,

13 (2): 5-18.

HEYER, W. R. 1977. Taxonomic notes on frogs from Madeira and Purus rivers, Brazil. Papéis Avuls. Zool.,

São Paulo, 31 (8): 141-162.

HEYER, W. R; RAND, A. S.; CRUZ, C. A. G.; PEIXOTO, O. L. & NELSON, C. 1990. Frogs of Boraceia.

Arg. Zool., São Paulo, 31 (4): 231-410.

SAVAGE, J. & HEYER, W. R. 1967. Variation and distribution in the tree frog genus Phyllomedusa in Costa

Rica. Beitr. neotr. Fauna, Stuttgart, 5: 111-131.

Recebido em 10.04.1994; aceito em 10.02.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 33-38,18 jun. 1996

FECUNDIDADE DE SETE ESPÉCIES DE GAMARÍDEOS (CRUSTACEA,

AMPHIPODA, GAMMARIDEA) ASSOCIADOS A

ALGA SARGASSUM CYMOSUM

Fosca Pedini Pereira Leite!

ABSTRACT

FECUNDITY OF SEVEN GAMMARIDEAN SPECIES (CRUSTACEA, AMPHIPODA,

GAMMARIDEA) ASSOCIATED TO THE ALGAE SARGASSUM CYMOSUM. Fecundity and the size and

volume of the eggs found in the brood pouch of Amphilocus neapolitanus Della Valle, 1893, Ampithoe ramondi

Audouin, 1826, Batea catharinensis Muller, 1865, Cymadusa filosa Savigny, 1816, Ericthonius brasiliensis

(Dana, 1853), Hyale media (Dana, 1853) and Sunamphithoe pelagica (Milne Edwards, 1850) were analyzed.

The number of layed eggs increases with the female head length. The size of the eggs is different among the

species. The fecundity of larger females is found to be higher than that of smaller one. The brood size is

variable among the species and is linearly related to the head length of the females.

KEYWORDS. Amphipoda, Gammaridea, fecundity, eggs, Sargassum.

INTRODUÇÃO

O estudo da fecundidade tem sido reconhecido como importante na compreensão

da ecologia e do ciclo de vida dos animais (COREY & REID, 1991). Os anfípodes,

especialmente os gamarídeos, representam o grupo de macrocrustáceos mais numeroso e

com maior diversidade de espécies entre aqueles que vivem associados às algas bênticas.

Estas algas oferecem uma grande variedade de condições aos animais que nelas vivem

(MOORE, 1981) e, por este motivo, têm sido intensivamente estudadas (LUBCHENCO

& GAINES, 1980; HAWKINGS & HARTHOLL, 1983; DAYTON, 1985; MARTIN-

SMITH, 1993, entre outros). As numerosas informações sobre o ciclo de vida e a repro-

dução dos anfípodes gamarídeos, de diferentes ambientes, foram recentemente reunidas

por MORINO (1978), NELSON (1980), VAN DOLAH & BIRD (1980), WILDISH (1982;

1988) e SAINTE-MARIE (1991).

Objetivou-se estudar aspectos da fecundidade das espécies de gamarídeos mais

representativas, numericamente, em Sargassum cymosum C. Agardh, 1820, alga facil-

mente encontrada nos costões rochosos do litoral do Estado de São Paulo visando a me-

lhor compreensão dos processos reprodutivos deste grupo de crustáceos.

1. Departamento de Zoologia, Instituto de Biologia, Universidade Estadual de Campinas. Caixa Postal 6109, CEP 13083-970, Campinas. SP,

Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):39-45, 18 jun. 1996

40 LEITE

MATERIAL E MÉTODOS

Foram estudadas 357 fêmeas ovadas pertencentes as espécies Amphilocus neapolitanus Della Valle,

1893 (n = 19), Ampithoe ramondi Audouin, 1826 (n = 26), Batea catharinensis Muller, 1865 (n = 6), Cymadusa

filosa Savigny, 1816 (n = 34), Ericthonius brasiliensis (Dana, 1853) (n = 17), Hyale media (Dana, 1853) (n =

249) e Sunamphithoe pelagica (Milne Edwards, 1850) (n = 6).

Sargassum cymosum foi coletada junto ao ancoradouro da base norte do Instituto Oceanográfico da

Universidade de São Paulo, Ubatuba, litoral norte de São Paulo, Brasil, entre janeiro de 1972 a janeiro de 1973.

As fêmeas ovadas das espécies estudadas foram separadas dos demais animais, contadas e medidas quanto ao

comprimento da cabeça. Os ovos contidos no marsúpio foram contados e separados em estádios marsupiais

conforme LEITE & WAKABARA (1989). Os ovos no estádio marsupial A foram medidos em seus dois diä-

metros, pois, de maneira geral, têm forma ovalada. O volume foi calculado aplicando-se a fórmula: V = 1/6

(d'+d?/2), sendo d' o maior e d? o menor diâmetro.

Todas as medidas foram tomadas com auxílio de uma câmara clara acoplada a um microscópio

estereoscópico e expressas em milímetros através de lâmina milimetrada, também com a escala projetada. Para

se verificar se o número de ovos estaria correlacionado com o comprimento (L) da fêmea, utilizou-se Lº, pois

de acordo com JENSEN (1958) seria o procedimento mais adequado para crustáceos malacostracos. O materi-

al estudado está depositado no Instituto Oceanográfico da Universidade de São Paulo.

RESULTADOS

O número de ovos variou consideravelmente entre as espécies estudadas. Amphilocus

neapolitanus apresentou 1 a 7 ovos, sendo que a maioria das fêmeas carregava no marsúpio

entre 3 a 5; Ampithoe ramondi, 2 a 49 ovos, maioria com 8 a 18; B. catharinensis, 2 a 18,

maioria com 5 a 10; C. filosa, 1 a 40, maioria com 12 a 26; E. brasiliensis, 1 a 27 ovos,

maioria com 3 a 11; H. media, 2 a 26, maioria com 6 e 18€e S. pelagica, 1 a 19, maioria

com 2 alT.

Pelos dados obtidos, Amphilocus neapolitanus apresentou a menor fecundidade e

C. filosa a maior, seguida por Ampithoe ramondi. S. pelagica e H. media apresentaram

fecundidades semelhantes assim como E. brasiliensis e B. catharinensis mas, estas últi-

mas menores que as duas precedentes.

Batea catharinensis, C. filosa e H. media apresentaram os maiores diâmetros mé-

dios e, as duas primeiras espécies, volumes dos ovos, vindo a seguir S. pelagica, Ampithoe

ramondi, Amphilocus neapolitanus e E. brasiliensis. Cymadusa filosa apresentou o mai-

or comprimento de cabeça, seguida por Ampithoe ramondi e S. pelagica, enquanto

Amphilocus neapolitanus o menor (tab. 1).

Das sete espécies analisadas, seis apresentaram correlação positiva (tab. II, figs. 1

- 7), e apenas B. catharinensis correlação negativa. Pode-se dizer que o número de ovos

aumenta com tamanho das fêmeas. Deve-se notar, contudo, o pequeno número de fêmeas

analisadas para B. catharinensis e S. pelagica.

DISCUSSÃO

O diâmetro e volume dos ovos varia entre as espécies estudadas. Amphilocus.

neapolitanus, apesar de ter menor comprimento de cabeça, possui ovos de diâmetro e

volume maiores que os de E. brasiliensis, enquanto que B. catharinensis, também de

pequeno tamanho, apresenta os maiores ovos entre as espécies analisadas. Em contraste,

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):39-45, 18 jun. 1996

Fecundidade de sete espécies de gamarídeos... 41

Tabela I. Diâmetro (mm) e volume (mm?) dos ovos e comprimento da cabeça (mm) médios e intervalo de

confiança ao nível de 5% das espécies de gamarídeos do litoral de São Paulo, no período janeiro de 1972 a

janeiro de 1973 (* dado não obtido).

Espécie Diâmetro maior Diâmetro menor Volume Comprimento da cabeça

Amphilocus neapolitanus 0,30+0,006 0,24+0,006 0,0103 0,320+0,021

Ampithoe ramondi 0,32+0,004 0,27+0,002 0,0134 0,630+0,242

Batea catharinensis 0,42+0,004 0,33+0,003 0,0276 0,490+0,048

“ Cymadusa filosa 0,39+0,003 0,35+0,002 0,0265 0,960+0,238

Ericthonius brasiliensis 0,23+0,003 0,19+0,003 0,0048 0,437+0,025

Hyale media 0,38+0,019 É “ 0,476+0,025

Sunamphithoe pelagica 0,36+0,003 0,28+0,004 0,0171 0,626+0,034

C. filosa, espécie de maior comprimento de cabeça entre as associadas a Sargassum

cymosum, possui ovos menores que os de B. catharinensis. Os maiores indivíduos per-

tencem as espécies da família Amphithoidae: Ampithoe ramondi, C. filosa e S. pelagica

e possuem diâmetros médios e volumes de ovos diferentes. Segundo STEELE & STEELE

(1975) o tamanho dos ovos está relacionado com a duração do desenvolvimento embrio-

nário, isto é, quanto maior o tempo de incubação, maior o ovo. Baseando-se nesta afirma-

ção, pode-se considerar que os ovos de Ampithoe ramondi se desenvolvem mais rapida-

mente que os de S. pelagica e C. filosa, respectivamente. LEITE (1981) indica que este

aspecto pode estar relacionado à coexistência das espécies no mesmo habitat, podendo-

se constituir em um mecanismo para evitar competição ou em estratégia reprodutiva pois

poderiam eclodir em períodos diferentes.

Tabela II. Equação de regressão do número de ovos no marsúpio pelo volume médio da cabeça da fêmea (mm)

das espécies de gamarídeos do litoral de São Paulo, no período janeiro de 1972 a janeiro de 1973.

Espécie n equação da reta ie

Amphilocus neapolitanus 19 ver 0,54

Ampithoe ramondi 26 y.—#6,37. patas .5199x 0,78

Batea catharinensis 6 vu SÓ e SS? 0,68

Cymadusa filosa 34 VA O o 620 0,73

Ericthonius brasiliensis 17 vv ES 08 TO 0,64

Hyale media 249 y= 414 + 59,32x 0,72

Sunamphithoe pelagica 6 y=-3,04 + 76,56x 0,97

De acordo com VAN DOLAH & BIRD (1980) e SAINTE-MARIE (1991), o tama-

nho dos ovos pode apresentar diferenças conforme a latitude. As escassas informações

sobre o tamanho de ovos, apresentados na literatura, permitem poucas comparações com

os ovos das espécies estudadas. Apenas os ovos de A. ramondi e C. filosa foram estuda-

dos e medidos (GILAT, 1962) e resultaram de maior diâmetro que os das espécies de

Ubatuba.

Entre os crustáceos, o tamanho dos ovos está inversamente relacionado com o

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):39-45, 18 jun. 1996

42 LEITE

número de ovos, para qualquer tamanho de fêmeas e, inclusive, entre espécies (STEELE

& STEELE, 1975; NELSON, 1980). De maneira geral, as fêmeas maiores apresentam

maior número de ovos. As espécies aqui estudadas mostram comportamento semelhante

notando-se, inclusive, que o tamanho da ninhada está inversamente relacionado ao diä-

metro do ovo.

VAN DOLAH & BIRD (1980) enumeram as vantagens da produção de ovos pe-

quenos, que podem se desenvolver mais rapidamente em ambientes de alto risco, assim

como as vantagens potenciais da produção de ovos grandes, em pequeno número, em

ambientes relativamente estáveis com baixo risco de mortalidade. Amphilocus neapolitanus

0,37 0,49 0,64 0,79 0,94 1,09 1,24 1,35

L(mm)DA FEMEA 1

(9)

< 40

0,40 0,60 0,80 1,00 1,20 1,40 e

= 3 =

L (mm)” DA FÊMEA 2 3 20

30 z

Nº ovos

0,52 0,60 0,68 0,76 0,80

— 3 a

L(mm) DA FEMEA

030 0,35 0,40 045 0,50

— 3 Aa

L(mm) DA FÊMEA 3

Figs. 1-4. Relação do número de ovos pelo volume médio (L mm) da cabeça da fêmea de: 1, Cymadusa filosa;

2, Amphithoe ramondi; 3, Sunamphitoe pelagica; 4, Ericthonius brasiliensis.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):39-45, 18 jun. 1996

Fecundidade de sete espécies de gamarídeos... 43

247

(Pd... .— ... . —. .

0,34 0,38 0,42 0,46 0,50 0,54 0,58 0,62 0,66 0,70

L(mm)? DA FÊMEA

Nº ovos

0,21 0,25 0,30 0,35 0,40 6

L(mm) DA FÊMEA

N2 ovos

o a id E |

0,45 - 0,47 0,49 051 0,53 0,55

— 3 ER

L(mm) DA FEMEA

Figs. 5-7. Relação do número de ovos pelo volume médio (L mm?) da cabeça da fêmea de: 5, Hyale media; 6,

Amphilocus neapolitanus; 7, Batea catharinensis.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):39-45, 18 jun. 1996

44 LEITE

produz poucos ovos grandes, sendo uma espécie das mais numerosas entre os gamarídeos

associados à Sargassum cymosum, ambiente considerado estável (LEITE, 1981). Em

contraste, E. brasiliensis produz grande número de pequenos ovos, fato relacionado com

o ambiente de maior risco em que vive, tubo semi-enterrado no substrato, e, portanto,

mais facilmente sujeita à perda ou dano dos ovos pelo deslocamento do tubo pela ação

das ondas (MOORE, 1981).

O número de ovos tem sido relacionado ao comprimento e volume das fêmeas:

linearmente (BREGAZZI, 1972, FISH, 1975, HUGHES, 1978); exponencialmente

(CHENG, 1942; KANNEWORE, 1965; THURSTON, 1970); linearmente e expo-

nencialmente (SHEADER, 1978); ou sem correlação (GILAT, 1962). VAN DOLAH &

BIRD (1980), analisando dados da literatura, concluíram que, para as espécies analisa-

das, o número de ovos aumenta com o tamanho da fêmea. GILAT (1962), WILLIAMS

(1978) e WILDISH (1979) verificaram, nas espécies estudadas, que o tamanho dos ovos

era constante em relação ao tamanho da ninhada ou da fêmea. JENSEN (1958) analisou

fêmeas com ovos de diversos grupos de crustáceos Malacostraca e concluiu que o núme-

ro de ovos é função linear do volume da fêmea. O mesmo foi demonstrado por KINNE

(1961) e THURSTON (1970), entre outros.

O número, tamanho e volume dos ovos constituem-se em características específi-

cas e, portanto, as espécies apresentam desenvolvimento embrionário com durações dife-

rentes. O número de ovos varia com o tamanho da fêmea, isto é, quanto maior a fêmea,

maior o número de ovos.

Agradecimentos. À Dra. Yoko Wakabara pela orientação e à Fundação de Amparo à Pesquisa do

Estado de São Paulo (FAPESP) pela bolsa concedida durante o desenvolvimento deste trabalho. (Proc. nº 75/

1023)

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BREGAZZI, P. K. 1972. Life cycles and seasonal movements of Cheirimedon femoratus (Pfeffer) and

Tryphosella kergueleni (Miers) (Crustacea: Amphipoda) Br. Antarct. Surv. Bull., Oxford, 30: 1-34.

CHENG, C. 1942. On the fecundity of some gammarids. J. mar. biol. Ass. U. K., Cambridge, 25: 467-475.

COREY, S. & REID, D.M. 1991. Comparative fecundity of decapods crustaceans. I. The fecundity of thirty-

three species of nine families of caridean shrimp. Crustaceana, Lieden, 60 (3) 270-294.

FISH, J. D. 1975. Development, hatching and brood size in Brathyporeia pilosa and B. pelagica (Crustacea:

Amphipoda). J. mar. biol. Ass. U.K., Cambridge, 55 (2): 357-368.

GILAT, E. 1962. The benthonic Amphipoda of the Mediterranean coast of Israel. II. Ecology and life history.

Bull. Res. Coun. Israel, Jerusalem, 11 (1-2): 71-92.

HUGHES, R. G. 1978. Life-histories and abundance of epizoites of the hydroid Nemertesia antennina (L.). J.

mar. biol. Ass. U. K., Cambridge, 58: 313-332.

KANNEWORFF, E. 1965. Life cycle, food and growth of the amphipod Ampelisca macrocephala from

Oresund. Ophelia, Helsingor, 2 (2): 305-318.

JENSEN, J. P. 1958. The relation between body size and number of eggs in marine malacostrakes. Meddr.

Danm. Fisk.-og Hvunders., Charlottenlund, n.s., 2(19): 1-25.

KINNE, O. 1961. Growth, molting frequency, hearth beat, number of eggs and incubation time in Gammarus

zadacchi exposed to different environments. Crustaceana, Lieden, 2 (1): 26-36.

LEITE, FPP. 1981. Aspectos do ciclo de vida das espécies mais representativas de Gammaridea (Crustacea,

Amphipoda) do fital da praia do Lamberto, Ubatuba, estado de Säo Paulo. Tese de Doutorado, Insti-

tuto Oceanográfico da Universidade de São Paulo, São Paulo, 177 p.

LEITE, F. P.P.& WAKABARA, Y. 1989. Aspects of marsupial and post-marsupial development of Hyale

media (Dana) 1853 (Hyalidae, Amphipoda). Bull. mar. Sci., Lawrence, 45(1): 85-97.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):39-45, 18 jun. 1996

Fecundidade de sete espécies de gamarídeos... 45

MOORE, P. G. 1981. The life histories of the amphipods Lembos websteri Bate and Corophium bonelli Milne

Edwards, in kelp holdfasts. J. exp. mar. Biol. Ecol., Amsterdam, 49 (1): 1-50.

MORINO, H. 1978. Studies on the Talitridae (Amphipoda, Crustacea) in Japan. III. Life history and breeding

activity of Orchestia platensis Kroyer. Publs Seto mar. biol. Lab., Wakayama, 24(4-6): 245-267.

NELSON, W. G. 1980. Reproductive patterns of gammaridean amphipods. Sarsia, Oslo, 65 (2): 61-71.

SAINTE-MARIE, B. 1991. A review of the reproductive bionomics of aquatic gammaridean amphipods:

variation of life history traits with latitude, depth, salinity and superfamily. Hydrobiologia, Dordrecht,

223: 189-227.

SHEADER, M. 1978. Distribution and reproductive biology of Corophium insidiosum (Amphipoda) on the

North East cost of England. J. mar. biol. Ass. U. K., Cambridge, 58: 585-596.

STEELE, D.H. & STEELE, V.J. 1975. The biology of Gammarus (Crustacea, Amphipoda) in the northwestern

Atlantic. XI. Comparison and Discussion. Can. J. Zool., Ottawa, 53 (8): 1116-1126.

THURSTON, M. H. 1970. Growth in Bovallia gigantea Pfeffer (Crustacea, Amphipoda). In: Holdgate, M.

W. ed. Antarctic ecology. London, Academic. v. 1, p. 269-278.

VAN DOLAH, R. F. & BIRD, E. 1980. A Comparison of reproductive patterns in epifaunal and infaunal

gammaridean amphipods. Estudar. Coast Mar. Sci.,‚London, 11: 593-604.

WILDSH, D.J. 1979. Reproductive consequenses of the terrestrial habit in Orchestia (Crustacea: Amphipoda).

Int. J. Invert. Reprod., Amsterdam, 1: 9-20.

-— . 1982. Evolutionary ecology of reproduction in gammaridean Amphipoda. Int. J. Invert. Reprod.,

Amsterdam, 5: 1-19.

__.1988. Ecology and natural history of aquatic Talitroidea. Can. J. Zool., Ottawa, 66: 2340-2350.

WILLIAMS, G. C. 1978. The annual pattern of reproduction of Talitrus saltator (Crustacea: Amphipoda:

Talitridae). J. zool. Lond., Oxford, 184: 231-244.

Recebido em 19.07.1994; aceito em 30.03.1995.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):39-45, 18 jun. 1996

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A vo sffarestorivironmens. 4 Rab hácabem: 3474 CZ

it. Aspectos do-cicio des ida cas vnpérias axgis ropegeratatiras de Gai

do nl da prelo do Lamento, Ubatuba, estudo de São Paulo:

pro da Unversidude da São Pauls. So Pau. Lit

(ad RA, E 189. Aspeotl of irapoiapdal and part mereupl

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ASPECTOS HISTOLÓGICOS DO OVÁRIO DURANTE O PROCESSO DE

VITELOGENESE EM BOOPHILUS MICROPLUS (ACARINA, IXODIDAE)

Casimiro F. Garcia!

Sonia M. L. de Garcia”

Rosane Nunes Garcia”

ABSTRACT

HISTOLOGICAL ASPECTS OF THE OVARY DURING THE PROCESS OF VITELLOGENESIS

IN BOOPHILUS MICROPLUS (ACARINA, IXODIDAE). Histological modifications during the process of

yolk formation in the tick Boophilus microplus (Canestrini, 1887) were studied. The presence of the epithelial

cells of the wall of the ova, the funicular cells (that coat the oocytes) and the oocytes in different stages of

development were focused. During the process of yolk formation there is a longitudinal depression region

which is occupied by oocytes in the pre-synthesis fase. In the transition region between the oviduct and the

ovary there is an area in which mature oocytes are present too. The longitudinal groove 1s still present at the

time of oviposition. With the increase of the yolk synthesis the oocytes protude toward the hemocele and at the

end of this process oocytes adhere to the ovary only by a connective membrane. At the time of oviposition, the

funicular cells, as well as, the coat cells of ovary change their morfology from columnar or cuboid to scamous

cells.

KEYWORDS. Boophilus microplus, vitellogenesis, female reproductive system.

INTRODUÇÃO

Estudando o aparelho reprodutor feminino de Argas (Persicargas) arboreus (Kaiser,

Hoogstraal & Kohls, 1968), Hyalomma (Anatolicum) excavatum (Koch, 1844) e da for-

ma partenogenética Haemophysalis (Kaiseriana) longicornis (Neumann, 1901), KHALIL

(1969, 1970 e 1972) definiu duas fases importantes no desevolvimento dos ovócitos:

uma na interfase e não se nota crescimento efetivo dos ovócitos e outra fase de cresci-

mento que inclui a vitelogênese e a formação da casca, tendo início somente depois da

fertilização, em Argas e Hyalomma e após a alimentação em Haemophysalis.

JENNY (1971) demonstrou que o início da viletogênese em Ornithodorus moubata

(Murray, 1877) coincide com a primeira alimentação, logo após a cópula e que o vitelo é

produto de duas fontes: uma proveniente da maquinaria da síntese proteica do ovócito,

constituindo uma elaboração endógena, e a outra fonte é exógena, proveniente de subs-

tâncias da hemolinfa absorvidas pelo ovócito. A síntese proveniente de material exógeno

1. Instituto de Biociências, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul. Avenida Ipiranga, 6681, CEP 90619-900 Porto Alegre, RS, Brasil.

2. Instituto de Biociências, Departamento de Ciências Morfológicas, Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Rua Sarmento Leite, 500, CEP

90050-170 Porto Alegre, RS, Brasil.

3. Bolsista de Iniciação Científica - PROPESP/UFRGS.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

48 GARCIA; GARCIA & GARCIA

ao ovócito continua e pode exceder à síntese endögena. No ovo maduro, as proteínas

localizadas centralmente são predominantemente endógenas, enquanto que as deposita-

das perifericamente são provenientes da atividade exógena.

A necessidade de engurgitamento, para que a fêmea comece seu processo de

vitelogênese, foi observada em Ornithodorus moubata por AESCHLIMANN & HECKER

(1967, 1969). A maioria das proteínas provenientes do sangue do hospedeiro através do

engurgitamento do parasita é transformada em proteína do vitelo por células do aparelho

digestivo ou células do corpo gorduroso (DIEHL et al. 1991). Ao mesmo tempo que o

vitelo se forma, e também dependendo da alimentação da fêmea, o próprio ovócito ela-

bora uma cutícula que o reveste externamente (LEES & BEAMENT, 1948).

KHALIL (1969; 1970) observou que os ovários de Argas arboreus e Hyalomma

excavatum apresentavam uma zona mais estreitada nas suas proximidades com os ovidutos

e que ali se encontravam ovócitos, apenas, em fases precoces de desenvolvimento. Em

1969, definiu a parede ântero-dorsal do ovário de A. arboreus como zona germinativa.

BRINTON & OLIVER (1971) salientaram a existência, em Dermacentor andersoni

(Styles, 1902), de um sulco longitudinal ao longo do eixo maior da parede do ovário onde

somente se encontrariam ovócitos em desenvolvimento inicial.

BALASHOV (1972) estabeleceu cinco estágios no desenvolvimento dos ovócitos

de Ixodoidea. O estágio I tem início ainda durante a fase ninfal, quando se inicia o

engurgitamento; ocorre a passagem de ovogônias para ovócitos de primeira ordem. O

estágio II inicia-se quando o adulto começa seu engurgitamento e termina com o apare-

cimento dos primeiros grânulos de vitelo no citoplasma. Neste estágio, ocorre um grande

crescimento citoplasmático do ovócito, notando-se a protrusão deste em direção à

hemocele, prendendo-se à superfície do ovário pelas células funiculares. Os estágios I e

Il correspondem à fase pré-vitelogênica. Os estágios III e IV correspondem à fase

vitelogênica do ovócito, iniciando-se com o surgimento dos primeiros grânulos de vitelo

e terminando com a ovulação. O estágio V corresponde aos ovócitos já ovulados e que

estão na luz do ovário e dos ovidutos.

O processo de vitelogênese tem importância não somente para histologistas,

fisiologistas e bioquímicos, como também para parasitólogos, uma vez que o carrapato é

transmissor de vários agentes patogênicos, como vírus, bactérias, rickettsias e protozoários

por transmissão transovariana (BURGDORFER & VARMA, 1967; BALASHOV, 1972;

BURGDORFER & BRINTON, 1975). GARCIA et al. (1987) estudaram o aparelho

reprodutor de Boophilus microplus, carrapato parasita do bovino do Rio Grande do Sul,

enfatizando a morfologia e histologia da vagina, receptáculo seminal, útero, ovidutos e

glândulas sexuais acessórias. Pretende-se, no presente trabalho, analisar as modificações

histológicas ocorridas no ovário deste ácaro durante seu processo de vitelogênese.

MATERIAL E MÉTODOS

Foram utilizadas fêmeas de Boophilus microplus em engurgitamento, completamente engurgitadas e

em postura. Estas últimas, foram mantidas em laboratório até sua postura, em placas de Petri, com algodões

embebidos em água para manter a umidade do ar. Os exemplos foram coletados diretamente de gado bovino

leiteiro, em uma fazenda em Viamão, Rio Grande do Sul, Brasil.

As fêmeas foram fixadas pela região dorsal em fita gomada de dupla face, em placa de Petri com

parafina endurecida. Sob microscópio estereoscópio tiveram as paredes laterais e posterior de seu corpo

seccionadas. A parede ventral foi rebatida anteriormente e suas estruturas internas ficaram expostas. Lavando-

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

Aspectos histológicos do ovário... 49

se constantemente com solução Ringer, própria para carrapatos, seus aparelhos reprodutores foram dissecados,

isolados e fixados em Bouin ou formol 10% durante 10 - 12 horas. Seguiu-se a rotina para inclusão em parafi-

na.

Cortes histolögicos de 5 micrômetros foram corados pela hematoxilina-eosina e a técnica do ácido

periódico de Schiff (P.A.S.) foi aplicada em alguns casos. Algum material foi fixado em gluteraldeído e ósmio,

constrastado com acetato de uranila e citrato de chumbo. Neste caso a inclusão foi feita em Epon e foram

obtidos cortes semi-finos de 1 micrômetro com ultra-micrótomo. As lâminas histológicas de estudo estão de-

positadas no Laboratório de Histologia e Embriologia do Departamento de Ciências Morfológicas do Instituto

de Biociências da Universidade Federal do Rio Grande do Sul.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

A parede do ovário de fêmea adulta em engurgitamento está constituída por três

tipos diferentes de células (fig. 1): células epiteliais cúbicas de revestimento (R), células

colunares funiculares (F) de citoplasma claro, que sustentam os ovócitos (O) em proces-

so de maturação e ovócitos em diferentes estágios de maturação. Uma membrana hialina,

de natureza conjuntiva, a túnica própria (fig. 2, TP), recobre o ovário externamente, limi-

tando-o com a hemocele.

Quando se inicia o processo de vitelogênese, em Boophilus microplus, o ovócito

começa a crescer, a expandir-se em direção à hemocele. As células funiculares tornam-se

colunares e apoiam o ovócito delas. As células funiculares que prendem os ovócitos ao

tecido ovarino, foram descritas para O. moubata por AESCHLIMANN & HECKER

(1969), para Hyalomma excavatum, (KAHLIL, 1970) e para Haemophysalis longicornis,

(KHALIL, 1972). CHINERY (1965) observou que, quando os ovócitos de Haemophysalis

spinigera atingem 100 micrômetros, adquirem uma base funicular, a partir de uma cama-

da simples de células epiteliais indiferenciadas da parede do ovário. BRINTON & OLIVER

(1971) descrevem que fêmeas que estão se alimentando apresentam os ovócitos em de-

senvolvimento presos ao ovário por um pedicelo, ou seja, células funiculares.

A túnica própria acompanha a expansão do ovócito em direção à hemocele (fig. 2),

e também apresenta similaridade à estrutura membranosa descrita para outros grupos de

carrapatos. Em O. moubata, LEES & BEAMENT (1948) a descreveram como uma fina

membrana hialina, não quitinosa, enquanto AESCHLIMANN & HECKER (1969) refe-

riram-se à mesma estrutura como uma membrana basal a qual denominaram de túnica

própria ou “manteau”. ARTHUR (1962) descreveu uma membrana hialina fina, não

quitinosa, recobrindo a região do ovário de Argasidae, a partir da qual os ovos são

protrundidos. CHINERY (1965) chamou de tecido conjuntivo à mesma membrana que

envolve o ovário de Haemophysalis spinigera, enquanto que BRINTON & OLIVER

(1971), além do tecido conjuntivo desta membrana, relatam um tecido muscular como

componente da parede ovariana de D. andersoni. KHALIL (1972) referiu-se à membra-

na externa que envolve o ovário de Haemophysalis longicornis como sendo contínua

aquela que envolve o oviduto, constituída por uma fina camada de tecido conjuntivo.

O ovócito, em B. microplus, à medida que a vitelogênese progride, adquire uma

membrana de natureza cuticular que o recobre (fig. 3, C). A deposição de um envoltório

simultaneamente com o processo de vitelogênese foi descrita para O. moubata por LEES

& BEAMENT (1948). ARTHUR (1962) observou a formação do envoltório em Ixodes

ricinus (Linnaeus, 1758); KHALIL (1969, 1970), em A. arboreus, e em Hyalomma

excavatum, observou a deposição desta camada do ovo como uma estrutura homogênea

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

50 GARCIA; GARCIA & GARCIA

Figs. 1 - 4. Boophilus microplus, fêmeas em engurgitamento: 1, 2, parede do ovário, inclusão em Epon, cortes

semifinos corados com azul de toluidina; 3, formação da casca, 4, ovário em corte longitudinal, inclusão em

parafina, cortes corados com hematoxilina-eosina. (C, cutícula; F, células funiculares; O, ovócitos; R, células

de revestimento; SL, sulco longitudinal; TP, túnica própria). Barra = 20 mm exceto fig. 4 = 200 um.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

Aspectos histológicos do ovário... 5]

Figs. 5 - 8. Boophilus microplus. 5, corte longitudinal de ovário de fêmea em engurgitamento; 6, corte trans-

versal de ovário de fêmea em postura; 7, ovócito em início de vitelogênese; 8. ovócitos em diferentes estágios

de desenvolvimento; 5, 6 e 8, inclusão em parafina, coloração hematoxilina-eosina; 7, inclusão em Epon, corte

semifino corado com azul de toluidina. (G, grânulos de vitelo; F, células funiculares; L, luz do ovário; O,

ovócito em vitelogênese; O M, ovócito maduro jovem; OJ, ovócito jovem; O. OV, ovócito ovulado (dentro da

luz do ovário); R, células de revestimento do ovário; SL, sulco longitudinal). Barra Fig. 5 = 150

um, Figs. 6, 8 = 50 um, Fig. 7 = 20 um.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

GARCIA; GARCIA & GARCIA

em torno dele e sob a membrana externa distendida. Esta deposição ocorre enquanto o

ovócito ainda está preso pelas células funiculares, durante a vitelogênese.

AESCHLIMANN & HECKER (1969) observaram a formação desta camada do ovo de

O. moubata como um produto elaborado pelo próprio ovócito. É por esta razão que se

referem a este revestimento como cutícula e não córion como nos insetos, onde esta

estrutura é elaborada pelas células funiculares e não pelo ovócito.

Ao longo de todo o ovário de B. microplus, encontram-se ovócitos em vários está-

gios de maturação, mas longitudinalmente, em sua linha média, aparecem ovócitos mais

jovens, constituindo no seu conjunto um sulco longitudinal, cada vez mais evidente à

medida que o desenvolvimento progride, justamente devido às menores dimensões dos

ovócitos ali localizados (figs. 4, 5). Observação similar foi feita por BRINTON & OLIVER

(1971) para o ovário de D. andersoni. Não consideramos, em B. microplus, este sulco

como um tecido germinativo, por não terem sido observadas figuras mitóticas nesta re-

gião. As observações feitas no ovário de B. microplus demonstraram que na zona de

transição com os ovidutos somente são encontrados ovócitos em estágios precoces de

desenvolvimento, semelhante ao que foi descrito por KHALIL (1969, 1970), para A.

arboreus e Hyalomma excavatum. Contudo, não consideramos se tratar de uma zona

germinativa por não termos encontrado figuras mitóticas. Quanto ao restante da estrutura

ovariana, verificou-se ser semelhante aos demais ixodídeos, conforme descrito por

ARTHUR (1962), por apresentar ovos em desenvolvimento ao longo de todo o seu com-

primento.

A medida que o processo de vitelogênese progride, o ovócito vai ficando repleto de

grãos e seu tamanho aumenta consideravelmente. Devido ao grande aumento de seu vo-

lume, ele vai se expandindo em direção à hemocele, mas sempre preso ao ovário, pois a

túnica própria não é rompida. Por ocasião da ovulação, o ovócito é liberado para a luz do

ovário. Provavelmente, em B. microplus o fator que promove a ovulação é o contínuo

crescimento do ovo, o qual impõe uma pressão sobre a elástica túnica própria, que acaba

por forçá-lo pela abertura entre as células funiculares, determinando sua passagem para o

interior do lümen ovariano, conforme já sugerido por Christophers (1906) (apud

BALASHOV, 1972), para O. savigny (Audouin, 1826) e LEES & BEAMENT (1948),

para O. moubata.

Próximo aos ovócitos maturos prestes a ovular ou nas imediações daqueles já

ovulados, nota-se que as células de revestimento do ovário passam de cúbicas a quase

pavimentosas, o mesmo devendo ter ocorrido com as células funiculares, desde que estas

se tornaram difíceis de ser visualizadas (fig. 6, R). Em alguns cortes históricos foi obser-

vada uma pequena luz entre as células funiculares; provavelmente a partir deste ponto

ocorre a extrusão do ovócito no momento da ovulação, forçando passagem entre elas e,

consequentemente, determinando mudanças de sua forma de cilíndrica para cúbica.

Os ovócitos, até atingirem sua maturação completa e deixarem o ovário, passam

por duas importantes fases: a primeira de pré-vitelogênese e a segunda de crescimento

efetivo, que compreende o processo de vitelogênese e formação da cutícula do ovo. Se-

gundo KHALIL (1969), a primeira fase de desenvolvimento dos ovos de A. arboreus

consiste em um simples crescimento até atingirem 100 micrômetros. Inicia-se então uma

segunda fase, a vitelogênese. KHALIL (1972) também descreve estas duas fases para

Haemophysalis longicornis, de um modo semelhante ao observado em A. arboreus. Em

1970, o mesmo autor faz descrição semelhante para Hyalomma excavatum, embora, nes-

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

Aspectos histológicos do ovário... 53

te caso, os ovócitos terminam a primeira fase já ao atingirem 24 micrômetros de diâme-

tro.

Logo que um ovócito começa a crescer, tende a migrar da zona do sulco longitudi-

nal para as paredes laterais e póstero-ventral do ovário. Permanecem no sulco os ovócitos

precoces (figs. 4, 5, SL). Estes apresentam núcleo bastante grande, cromatina frouxa e

citoplasma nitidamente basófilo. A basofilia para ovócitos iniciais foi descrita por KHALIL

(1969) para A. arboreus, por KHALIL (1972) para Haemophysalis longicornis e por

AESCHLIMANN & HECKER (1969) em O. moubata. Estes autores acreditam que esta

basofilia citoplasmática deve-se aos numerosos ribossomos observados e que os ovócitos

estão prestes a sintetizar as proteínas que compõem o vitelo devido as diversas zonas de

Golgi e pela atividade do núcleo.

A segunda fase, a vitelogênese, ocorre fora do sulco longitudinal. Os primeiros

indícios de vitelogênese em B. microplus, são notados pela deposição de pequenos grä-

nulos eosinófilos de vitelo no citoplasma do ovócito. Inicialmente estes grânulos não se

destacam no interior do citoplasma; aparecem mais concentrados perinuclearmente, mas

também esparsos pelo citoplasma. À medida que o processo avança, estes grânulos vão

apresentando diâmetro maior, preenchendo cada vez mais o ovócito (fig. 7, G), rechaçando

o citoplasma para a periferia, o qual, finalmente, não é mais observado. A célula fica

completamente preenchida por grânulos de vitelo caracteristicamente eosinófilos (figs.

6, 8). A técnica do ácido periódico de Schiff (P.A.S.) demonstrou resposta altamente

positiva para os grânulos de vitelo de B. microplus como já havia sido demonstrado para

D. andersoni por CHINERY (1965). Tal positividade demonstra riqueza de carbohidratos

na composição destes grânulos. Através de outros testes histoquímicos, CHINERY (1965)

demonstrou em Haemophysalis spinigera a presença de proteínas básicas aparentemente

ligadas aos carbohidratos na forma de um complexo glicoproteico. A presença de prote-

ínas nos grânulos de vitelo foi também relatada para O. moubata por AESCHLIMANN

& HECKER (1969). Segundo os estágios descritos por BALASCHOV (1972) para o

grupo dos ixodídeos, poderíamos considerar que a fase pré-vitelogênica de B. microplus

corresponderia ao estágio II, enquanto que o preocesso de vitelogênese se enquadraria

nos estágios III e IV.

Embora se tenham observado densas massas de espermatozóides na luz dos ovidutos

e também no ovário, mas neste de forma mais difusa e em menor quantidade, não foi

possível identificar o momento e o local exatos da fecundação, pelas técnicas utilizadas.

Agradecimentos. Ao Núcleo Interdepartamental de Microscopia Eletrônica (UFRGS, NIDEME), na

pessoa de seu coordenador Dr. Felipe Luís Schneider, pelo uso de instalações. As professoras Maria Cristina

Fassioni Heuser (NIDEME) pela elaboração dos cortes semifinos e Eliane de Oliveira Borges, (Instituto de

Biociências, UFRGS) pela colaboração na execução das técnicas histológicas.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

AESCHLIMANN, A. & HECKER, H. 1967. Observations préliminaires sur l’ultrastructure de l’ovocyte

developpement chez Ornithodorus moubata Morray. Acta trop., Amsterdam, 24 (3): 225-243.

— . 1969. Vitellogénêse et formation cuticulaire chez l’oeuf d’Ornithodorus moubata Murray (Ixodoidea:

Argasidae). Etude au microcroscope &letronique. Acaralogia, Paris, 11 (2): 180-192.

ARTHUR, D.R. 1962. Reprodution, Development and Life Histories. In: Ticks and Diseases. Oxford Pegamon

.95p-170-213:

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

54 GARCIA; GARCIA & GARCIA

BALASCHOV,Y. S. 1972. A translation of bloodsucking ticks (Ixodoidea) - vectors of diseases of man animals.

Misc. Publ. Entomol. Soc. Am., Lanham, M. D., 8: 161-376.

BRINTON, L. P. & OLIVER, J. H. Jr. 1971. Gross anatomical histological and cytological aspects of ovarian

development in Dermacentor andersoni Stiles (Acari:Ixodidae). J. Parasit., St. Lawrence, 57 (4): 708-709.

BURGDORFER,W. & BRINTON,L.P. 1975. Mechanisms of transovarial infection of spotted fever rickettisiae

in ticks. Ann. N. Y. Acad. Sci., New York, 266: 61-72.

BURGDORFER, W. & VARMA,M.G.R. 1967. Trans-stadial and transovarial development of disease agents

in arthropods. A. Rev. ent., Standford, California, 12: 347-376.

CHINERY, N. A. 1965. Studies on the various glands of the tick Haemophysalis spinigera Neumann 1897.

Acta trop., Amsterdam, 22 (3): 235-266.

DIEHL, P. A.; AESCHLIMANN,A. & OBENCHAIN, F. D. 1991. Tick reprodution: oogenesis and oviposition.

In: GALUN, R.J. & OBENCHAIN, F. D., eds. Physiology of ticks. Oxford, Pergaman. p. 277-350.

GARCIA, C.F; GARCIA, S. M.L. & SILVA, V. M. 1987. Morfoanatomia e histologia do aparelho reprodutor

feminino de Boophilus microplus (Acari, Ixodidae). Acta Biol. Par., Curitiba, 16 (1-4): 1-13.

JENNY, L. 1971. Synthesis and uptake of proteins during vitellogenesis in oocytes of Ornithodorus moubata

Murray (Ixodoidea: Argasidae). Acta trop., Amsterdam, 28 (2): 105-163.

KHALIL, G. M. 1969. Biochemical and physiological studies of certain ticks (Ixodoidea). Gonad development

and gametogenesis in Argas (Persicargas) arboreus. Kaiser, Hoogstraal and Kohls (Argasidae). J. Parasit.,

St. Lawrence, 55 (6): 1278-1297.

__. 1970. Biochemical and physiological studies of certain ticks (Ixodoidea). Gonad development and

gametogenesis in Hyalomma (H.) anatolicum excavatum Koch (Ixodoidea). J. Parasit. St. Lawrence, 56

(3): 596-610.

__. 1972. Gonad development in the parthenogenetic Haemophysalis (Kaiseriana) longicornis Neumann

(Ixodoidea: Ixodidae). J. Parasit., St. Lawrence, 58 (4): 817-823.

LEES, A. D. & BEAMENT, J. W. L. 1948. An egg waxing organ in ticks. Q. Jl. microsc. Sci., London, 89:

291-232.

Recebido em 22.08.1994; aceito em 05.04.1995.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 47-54, 18 jun. 1996

LARVAE OF NEOTROPICAL COLEOPTERA XXV. PHERHIMIUS DEJEANI

(CANDEZE, 1857) AND P. FASCICULARIS (FABRICIUS, 1787)

(ELATERIDAE, PYROPHORINAE, HEMIRHIPIND

Sônia A. Casari

Selma Bellusci!

ABSTRACT

Description of larva and pupa of Pherhimius dejeani (Candêze, 1857) and redescription of the larva of

P. fascicularis (Fabricius, 1787) are presented. The larvae of these species live inside decayed logs; they present

dorsal asperites and, P. fascicularis, has anal hooks. The comparison of larvae and pupa of Pherhimius with

other American Hemirhipini genera 1s included.

KEYWORDS. Elateridae, Hemirhipini, larva, Pherhimius, pupa.

INTRODUCTION

The genus Pherhimius Fleutiaux, 1942, includes 7 species distributed in North,

Central and South America. The larva of P. fascicularis (Fabricius, 1787) was briefly

described and illustrated (habitus, mandible, spiracle) by PETERSON (1960) and

illustrated (habitus, head, antenna, mandible, seventh and eighth segments) by BÖVING

& CRAIGHEAD (1930-1931) and illustrated (habitus) by BECKER (1991). We present

here, the first description of immatures of this genus. Larvae, pupae and adults of P.

dejeani were collected together under bark of decayed logs in “Fazenda Intervales”, a

State Natural Park of São Paulo, Brazil, and they are deposited in the larvae collection of

“Museu de Zoologia da Universidade de São Paulo” (MZSP). The redescription of P.

fascicularis was based on three dried larvae from Mississipi, USA, housed in the National

Museum of Natural History, Washington (USNM).

Pherhimius dejeani (Candêze, 1857)

(Figs. 1-20)

Mature larva. Length 22-27 mm. Body dorsoventrally flattened (figs.1, 2). Cream,

with head, pronotum, anterior half of mesonotum, prosternum and one spot of each

propleura reddish-brown; mandibles black.

Head (figs. 5, 6, 8) prognathous, deeply pigmented, heavily sclerotized, depressed,

1. Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, Caixa Postal 7172, 01064-970 São Paulo, SP, Brasil.(Bolsista do CNPq).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 55 -63, 18 jun. 1996

56 CASARI & BELLUSCI

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Figs 1-4. Pherhimius dejeani (Candêze). Larva: 1, dorsal; 2, lateral. Pupa: 3, dorsal; 4, apex of abdomen,

lateral. Figs 1-3 to the same scale.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 55-63, 18 jun. 1996

Larvae of Neotropical Coleoptera XXV.... 57

punctate and setous dorsally; longitudinal dorsal ridge parallel to lateral margins; row of

setae near each ventral ridge. Coronal suture short. Frontal suture lyre-shaped. Endocarina

long, extending between frontal arms. One stemma (fig. 8) well developed, transverse,

laterally placed at the basis of each antenna. Nasal tridentate dorsally with one seta each

side of median tooth. Paranasal lobes well developed with anterior margin brighter,

marginate by thin setae. Antennae (figs. 15, 16) 3-segmented: 1St segment, the longest,

setous dorsally; 2nd with small, membranous, laterodistal sensorial appendix; dorsal and

ventrodistal setae, longer than that of first segment; pedunculate setae near the sensorial

appendix; 37d segment, the shortest, with one long and 5 peg-like distal setae. Mandibles

(figs. 9-11) symmetrical, raised dorsolaterally near acetabulum, making antennal cavity;

penicillus absent; small longitudinal furrows dorso- and mesodistally. Maxilla (figs. 17,

18): stipites elongate, membranous distally; pedunculate dorsal setae in a group near

lacinia and forming an irregular lateral row; simple setae dorsally on palpifer; ventral

region with 3 lateral setae near apex; cardines fused to stipites, sclerotized distally, with

one seta. Maxillary palp 4-segmented: 1St segment with pedunculate setae; last segment

with dorsal digitiform-pegs in grooves (fig. 20). Galea palpiform and 2-segmented: 1St

segment transverse; 2Nd elongate with 2 simple and 3 pedunculate dorsal setae. Lacinia

covered by ramified and simple setae; setae extending posteriorly reaching hypopharyngeal

setal area. Labium (figs. 17, 18): prementum elongate, bifurcate distally and narrowed

proximally, membranous in more than distal half, with one irregular inclinate row of

pedunculate setae at base of each palpiger; postmentum elongate, subtriangular, with 2

pedunculate long setae proximally and several shorter and simple laterally; labial palpi 2-

segmented, more setous dorsally; distal segment with dorsal and ventral digitiform-pegs

in grooves (fig. 19) and some peg-like distally. Hypopharynx with 2 distal median stout

setae; median region with several campaniform organs (ZACHARUCH, 1962b); each

side with sclerotized areas covered by brush-like hairs; median basal region covered by

hairs. Postgular region (fig. 14) with several microsetae hardly comparable with

ZACHARUCH (1962a) patterns.

Pronotum as long as meso- and metanotum together at median region; reddish-

brown with anterior and basal band cream, the anterior larger; with irregular row of setae

near margins. Prosternum (fig. 6) triangular with small transverse darker area and one

seta near each anterior angle; posterior angle with 3 setae each side near distal sclerite.

Proepisternum setous. Mesonotum with approximately anterior half reddish-brown and

basal half cream, with long lateral setae and some asperites lateroanteriorly of cream

region. Metanotum longer than mesonotum, cream with some small darker areas; lateral

setae and lateral band of asperites continuing parallel proximal margin to middle direction.

A pair of biforous spiracles (fig. 7) located ventrolaterally between meso- and metasternum.

Legs (fig. 13) stout; coxa wide, with transverse band of stout setae and long hairs; stout

setae more concentrate near transverse sclerotization; trochanter and femur with stout

setae concentrate ventroanteriorly and long hairs ventroposteriorly; sparser stout setae on

femur; tibia with some stout setae and several long hairs; tarsungulus with 2 basal setae.

Abdominal segments 1-8 transverse with lateral setae; 1St tergite almost totally

covered by asperites except distal and proximal bands and area near each lateral margin;

asperites of median region decreasing in density from ISt to 4th segments; segments 1-7

with lateral band of asperites continuing parallel distal margin to middle direction; segment

8 with lateral band of asperites; segment 9 (figs. 1, 2, 12) elongate, slightly narrowed

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 55 -63, 18 jun. 1996

sg CASARI & BELLUSCI

Figs 5-14. Pherhimius dejeani (Candêze). Larva: 5, 8, head (dorsal, lateral); 6, head and prothorax, ventral; 7,

thoracic spiracle; 9-11, mandible (ventral, lateral, dorsal); 12, segment IX, lateral; 13, leg; 14, postgular region.

Figs 5, 8; 9, 12, respectively to the same scale.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 55-63, 18 jun. 1996

Larvae of Neotropical Coleoptera XXV.... 59

Figs 15-18. Pherhimius dejeani (Cand£ze). Larva: 15, 16, antenna (ventral, dorsal); 17, hypostoma, ventral;

18, hypostoma apex, dorsal. Figs. 15, 16, to the same scale.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 55 -63, 18 jun. 1996

60 CASARI & BELLUSCI

distally with apex upwardly directed; dorsal region with 2 longitudinal feeble furrows

near base; basal third with dorsal asperites and lateral setae, distal 2/3 with very sclerotized

carinate tubercles surrounded by setae; tubercles increasing in size to apex; distal region

with lateral and ventral setae. Segment 10 tubular, ventral, marginate distally by small

teeth intercalate by setae except at anterior region; teeth increasing in size posteriad; band

of setae parallel to distal margin starting in a tubercle-like sclerite near anterior region.

Anal opening longitudinal, tripartite distally. Spiracles biforous, smaller than thoracic,

located dorsolaterally on segments 1-8.

Pupa. Length 17-22mm. Cream and glabrous (fig. 3). Pronotum with one sclerotized

prolongation each fore angle and one laterally each hind angle. Abdominal segments 2-6

with dorsolateral sclerotized rounded edges, asperate marginally; a pair of gin traps on

segments 2-5; a pair of lateral spiracles on segments 1-6. Segment 9 (fig. 4) with a distal

pair of bifurcate sclerotized urogomphi upwardly directed with 2 small teeth between

then.

Material examined. BRAZIL. São Paulo: Guapiara (Fazenda Intervales, Monte Rosa), 12-13.X1.1992,

Exp. MZSP col., 2 larvae, 3 pupae and 3 adults fixed (MZSP).

Figs 19-20. Pherhimius dejeani (Candêze). Larva: 19, labial palp, distal segment; 20, maxillary palp, distal

segment. Scale = 20 um.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 55-63, 18 jun. 1996

Larvae of Neotropical Coleoptera XXV.... 61

Pherhimius fascicularis (Fabricius, 1787)

(Figs. 21-26)

Mature larva. Length 22-29mm. Cream with mandibles black; antennae and ante-

rior margin of cephalic capsule (dorsal and ventral) reddish-brown; cephalic capsule

yellowish-brown with some irregular dorsal darker areas (fig. 21). Prothorax slightly

darker than other segments.

Dorsal punctation of head (fig. 22) coarse, irregularly distributed, more concentrate

between cephalic ridges. Cephalic ridges well developed with internal parallel furrow;

stemmata round (fig. 23). Abdominal segments 1-8 with asperites, decreasing in density

apicad. Ninth segment (figs. 21, 24, 26) with bifid apex and carinate tubercles of varied

sizes; the apical larger; each tubercle with one basal seta, except the distal ones with more

than one. Tenth segment (figs. 24, 25) tubular, setous distally with 2 hooks and 2 small

tubercles.

Material examined. UNITED STATES OF AMERICA. Mississipi: Nicholson, 26.X11.1944, sweet

gum, dry dead branch, 1 dried larva (USNM); same locality, 18.1.1945, in galery sound wood, falled hickory, 1

dried larva (USNM); Picayune, 14.X11.1944, dry, dead limb of red oak, 1 dried larva (USNM).

REMARKS

The larva of P. dejeani differs from that of P. fascicularis especially by coloration

(clearer in the latter) and by features of cephalic capsule, density of asperites and shape

and ornamentation of ninth and tenth segments. The cephalic capsule is totally reddish-

brown with moderately coarse punctation in P. dejeani and partially reddish-brown with

very coarse punctation in P. fascicularis; the laterodorsal ridges are higher and the stemmata

smaller and round in P. fascicularis The dorsal asperites areas are larger and present only

on the abdominal segments of P. fascicularis; in P. dejeani they are present also on meso-

and metanotum and are more frequent dorsollateraly. The apex of ninth segment is bifid

apically in P. fascicularis and the carinate tubercles are more setous in P. dejeani. The

tenth segment presents two laterodistal hooks in P. fascicularis.

The larvae of Pherhimius share with Hemirhipus Latreille, 1829, the presence of

dorsal asperites. Comparing with one exuvia of Hemirhipus apicalis Cand£ze, 1857, P.

dejeani is resembled by apex of ninth segment entire and apex of tenth segment surrounded

by tooth. The larvae of Alaus Eschscholtz, 1829 (HARRIS, 1841; CHAPUIS &

CANDEZE, 1853; SALLÉ, 1855; JEWETT, 1946; PETERSON, 1960; STEHR, 1991)

and Chalcolepidius Eschscholtz, 1829 (SCHIODTE, 1869-1870, BÓVING &

CRAIGHEAD, 1930-1931) differ from that of Pherhimius by absence of dorsal asperites

and, except P. fascicularis, by ninth segment with bifid apex and tenth segment with two

laterodistal hook-like spines.

Comparing the pupa of P. dejeani with that of Chalcolepidius zonatus Eschscholtz,

1829 (COSTA et al., 1988), the prolongations of the fore and the hind angles of pronotum

are longer and with microspines in the former, the gin-traps are more strongly sclerotized

in the latter and the two distal prolongations of abdomen are located medially and with a

lateral spine in C. zonatus and laterodistal and bifurcate in P. dejeani.

Based on the known Hemirhipini larvae, it is difficult to establish the

autapomorphies for genera: the asperites are present in Pherhimius and in Hemirhipus

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 55 -63, 18 jun. 1996

6 CASARI & BELLUSCI

4 mm

Figs 21-26. Pherhimius fascicularis (Fabricius). Larva: 21, dorsal; 22, 23, head (dorsal, lateral); 24, segments

IX-X, lateral; 25, segment X, posterior; 26, segment IX, dorsal. Figs 22-26 to the same scale.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 55-63, 18 jun. 1996

Larvae of Neotropical Coleoptera XXV.... 63

and. the anal hooks are absent only in P. dejeani and H. apicalis. The only larval

autapomorphy for the tribe (CASARI-CHEN, 1994), the presence of laterodorsal longi-

tudinal cephalic ridges, is observed in P. dejeani and P. fascicularis.

Acknowledgments. To Dr. Natalia J. Vandenberg (USNM) for loaning the material of Pherhimius

fascicularis, Dr. Alberto G. F. C. Ribeiro (Instituto de Biociências da Universidade de São Paulo) for permit-

ting the utilization of the “Laboratório de Microscopia Eletrônica”, Ricardo Pinto da Rocha (MZSP) for taking

the pictures and for suggestions and Sergio Ide (MZSP) for revising the manuscript.

REFERENCES

BECKER, E. 1991. Elateridae. In: STEHR, F. W. ed. Immature Insects Dubuque, Kendall/Hunt. v.2 p. 410-

418.

BÖVING, A. G.& CRAIGHEAD, F. C. 1930-1931. Illustrated synopsis of the principal larval forms of the

order Coleoptera. Entomol.am., Lancaster, 11: 1-352.

CASARI-CHEN, S. A. 1994. Systematics and evolution of Hemirhipini from Old World and Australia. II.

Phylogeny of the tribe including the American genera (Coleoptera, Elateridae, Pyrophorinae). Revta bras.

Ent., Säo Paulo, 38(1): 161-252.

CHAPUIS, M. F. & CANDEZE, M.E. 1853. Catalogue des Larves des Coléoptêres. Mem. Soc. r. Sci. Liege,

Liege, 8: 347-653.

COSTA, C.; VANIN, S. A. & CASARI-CHEN, S. A. 1988. Larvas de Coleoptera do Brasil. Säo Paulo,

Museu de Zoologia de São Paulo. 282 p.

HARRIS, T. W. 1841. Areport on the insects of Massachusetts, injurious to vegetation. Cambridge, Folsom,

Wells and Thurston. 459 p.

JEWETT, H. H. 1946. Identification of some larval Elateridae found in Kentucky. Ky. Agr. Exp. Sta Bul.,

Kentucky, 489: 1-39.

PETERSON, A. 1960. Larvae of Insects. An introduction to Nearctic species. Part II. Coleoptera, Diptera,

Neuroptera, Siphonaptera, Mecoptera, Trichoptera. Columbus, A. Peterson. 416 p.

SALLE, A. 1855. Description de dix espêces nouvelles de Coléoptêres, recueillis de 1849 a 1851 dans la

République Dominicaine (ancienne partie espagnole de l’Ile de Saint-Domingue ou Haiti. Annls Soc. ent.

Fr., Paris, 3: 263-272.

SCHIODTE, J. C. 1869-1870. De metamorphosi eleutheratorum observationes: bidrag til insekternes

udviklingshistoire. Naturh. Tidssk., Kjobenharn, 6(3): 467-530.

STEHR, F. W.(ed.). 1991. Immature Insects. Dubuque, Kendall, Hunt v.2, 975 p.

ZACHARUCH, R. Y. 1962a. Some new larval characteres for the classification of the Elateridae into major

groups. Proc. R. ent. Soc. Lond.(B), London, 31: 29-32.

— . 1962b. Sense organs of the head larvae of some Elateridae (Coleoptera):their distribution, structure and

innervation. J. Morph., Philadelphia, 111: 1-33.

Recebido em 01.12.1994; aceito em 02.05.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 55 -63, 18 jun. 1996

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CARACTERIZAÇÃO DAS ESPÉCIES DE GRYLLOTALPIDAE

(ORTHOPTERA, ENSIFERA) DO RIO GRANDE DO SUL,

BRASIL, COM ALGUMAS OBSERVAÇÕES

BIOLÓGICAS E SONOGRÁFICAS!

Virgínia L. Canhedo-Lascombe”

Elio Corseuil

ABSTRACT

CHARACTERIZATION OF THE GRYLLOTALPIDAE SPECIES FROM RIO GRANDE DO SUL

STATE, BRAZIL, WITH SOME BIOLOGICAL AND SONOGRAPHIC OBSERVATIONS. Species of

Neocurtilla Kirby, 1906 and Scapteriscus Scudder, 1868 of the Rio Grande do Sul State, Brazil, are studied.

Neocurtilla robusta sp. n. and Scapteriscus riograndensis sp. n. are described. Scapteriscus acletus Rehn &

Hebard, 1916 is considered a junior synonym of Scapteriscus borellii Giglio-Tos, 1894. Sonographic studies,

keys and illustrations are added.

KEYWORDS. Gryllotalpidae, Neocurtilla, Scapteriscus, sound, morphology.

INTRODUCAO

Entre os ortöpteros, a família Gryllotalpidae reúne um pequeno grupo de espécies

emissoras de sons, importante pelos danos que pode causar a pastagens, gramados'e

algumas espécies de plantas cultivadas. Presente nas latitudes de climas quentes e tem-

perados, está representada, atualmente, por espécies dos gêneros: Gryllotalpa Latreille,

1802 (Velho Mundo: Europa, parte da Ásia, norte da África e Oceania), Gryllotalpella

Rehn, 1917 (Amazônia), Neocurtilla Kirby, 1906 (Américas, Madagascar e sul da Áfri-

ca), Scapteriscus Scudder, 1868 (Américas e parte da Ásia) e Triamescaptor Tindale,

1928 (Nova Zelândia). TOWNSEND (1983) apresentou chave para a identificação dos

gêneros.

As espécies do gênero Scapteriscus, com exceção de S. leprodactylus Chopard,

1928, da Índia e leste do Paquistão, são neotropicais, mas tornaram-se pragas importan-

tes no sul dos Estados Unidos, onde foram introduzidas (NICKLE & CASTNER, 1984;

FOWLER & COSTA, 1986). Neocurtilla hexadactyla (Perty, 1832), causadora de danos

principalmente nas hortaliças e plantações de arroz, apresenta, no Brasil, explosões

freada

Parte da Dissertação de Mestrado, Instituto de Biociências, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul.

2. Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotänica do Rio Grande do Sul. Caixa Postal 1188 90001-970 Porto Alegre, RS, Brasil. (Bolsista

CNPg, FAPERGS).

3. Laboratório de Entomologia, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul. Av. Ipiranga, 6681 90619-900, Porto Alegre, RS,

Brasil. (Bolsista CNPq).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

66 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

demográficas ocasionais consideradas economicamente importantes (FOWLER et al.,

1987c; FOWLER & VASCONCELOS, 1989). FOWLER & PINTO (1989) postularam a

hipótese da espécie ser nativa da América do Norte, onde suas populações são reguladas

por parasitóides, ausentes na América do Sul.

De grande importância são os estudos sonográficos realizados no grupo, pois espé-

cies crípticas, comuns entre os grilotalpídeos, têm sido diferenciadas acusticamente

(BENNET-CLARK, 1970b; TOWNSEND, 1983; NICKLE & CASTNER, 1984). Os

machos podem produzir, basicamente, sons de chamada, cortejamento e agressividade,

dependendo da situação em que se encontram, sendo os de chamada importantes no reco-

nhecimento das espécies. O mecanismo da produção de som é similar àquele de todos os

grilóideos: um plectrum na margem posterior das tégminas é atritado contra a superfície

inferior denteada da nervura contralateral Cubital,. BENNET-CLARK (1970a) demons-

trou a mecânica da produção acústica e admitiu que ambas as tégminas dos machos irra-

diam sons, podendo atuar juntas, e que existe uma estreita relação entre o tamanho e o

número de dentes da fila estridulatória e a amplitude dos trinados produzidos. RAGGE

(1955) estudou a estrutura das asas desses insetos. NICKERSON et al. (1979) e BENNET-

CLARK (1987) apresentaram dados sobre a importância das galerias construídas, asso-

ciadas às emissões sonoras. ULAGARAJ & WALKER (1973, 1975), ULAGARAJ (1976)

e FORREST (1982, 1983) realizaram estudos sonográficos e fonotáxicos com algumas

espécies de Scapteriscus e demonstraram o significado reprodutivo dos sons para os

grilotalpídeos.

NICKLE & CASTNER (1984) discutiram os prejuízos que as espécies introduzidas

causaram nas Américas do Norte e Central, apresentando chave de identificação, caracte-

rização morfológica e distribuição geográfica para algumas espécies de Scapteriscus.

FOWLER et al. (1985) estudaram os hábitos alimentares das espécies brasileiras.

Para o Rio Grande do Sul, SILVA et al. (1968) referiram Neocurtilla hexadactyla,

Scapteriscus borellii Giglio-Tos, 1894, S.didactylus (Latreille, 1804) e S.oxydactylus

(Perty, 1832). NICKLE & CASTNER (1984), FOWLER & COSTA (1986) e FOWLER

(1987a, 1988) citaram, também, S. abbreviatus Scudder, 1869, S. camerani Giglio-Tos,

1894 e S.vicinus Scudder, 1869. Para S. didactylus a citação de SILVA et al., 1968 está

incorreta, pois baseia-se na única referência de LIMA (1938) que a assinala para a região

Neotropical, sem precisar sua ocorrência. GIGLIO-TOS (1894, 1895, 1897)

WATTENWYL & REDTENBACHER (1892) e HEBARD (1928) registraram-na para o

Paraguai, Argentina e Uruguai, enquanto, contrariamente, NICKLE & CASTNER (1984)

e H.G. Fowler (com. pessoal) consideram sua distribuição restrita às faixas mais quentes

do continente americano.

O objetivo é caracterizar as espécies de Gryllotalpidae presentes no Rio Grande do

Sul e apresentar a adaptação de técnica capaz de analisar os sons produzidos.

MATERIAL E MÉTODOS

Foram examinados espécimens das seguintes coleções: CNPT, Centro Nacional de Pesquisas do Trigo,

Passo Fundo, RS, Brasil; CPHF, Coleção Harold Fowler, Rio Claro, SP, Brasil; CPSG, Coleção Aquiles Silveira-

Guido, Montevideo, Uruguai; DFCS, Departamento de Defesa Fitossanitária, Universidade Federal de Santa

Maria, Santa Maria, RS, Brasil; FAVU, Faculdade de Agronomia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul,

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 67

Porto Alegre, RS, Brasil; FZPU, Faculdade de Zootecnia e Veterinária, Pontifícia Universidade Católica do

Rio Grande do Sul, Uruguaiana, RS, Brasil; IPAG, Instituto de Pesquisas Agronômicas, Secretaria de Agricul-

tura do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brasil; MAPA, Museu Anchieta, Porto Alegre, RS. Brasil; MCPU,

Museu de Ciências, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brasil; MCNZ,

Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS, Brasil. Outras

instituições ou coleções mencionadas: ANSP, Academy of Natural Sciences, Philadelphia, EUA; DEUF,

Department of Entomology and Nematology, University of Florida, Gainesville, Florida, EUA; DEUN, De-

partamento de Ecologia, Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho”, UNESP, Rio Claro, SP;

FAMU, Faculdade de Agronomia, Montevideo, Uruguai; IPCT, Instituto de Pesquisas Científicas e Tecnológicas,

Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, RS; MCZC, Museum of Comparative

Zoology, Cambridge, Massachusetts, EUA; MIZT, Museo Instituto de Zoologia Sistemática, Universita di

Torino, Itália; MNRJ, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, RJ, Brasil;

MZSP, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, São Paulo, SP, Brasil; NMBS, Naturistorische Museums,

Berna, Suíça; SHS, Coleção Samuel H. Scudder (no MCZC, conforme HORN & KAHLE, 1936); USNM,

National Museum of Natural History, Smithsonian Institution, Washington, D. C., EUA.

As informações biológicas e sonográficas fornecidas são todas laboratoriais. A manutenção de adultos

e criação de ninfas foram realizadas em vivário, em vidros cilíndricos com 12 cm de altura e 8 cm diâmetro,

contendo no fundo uma camada de 2 cm de areia, granulação média, autoclavada. A temperatura ambiente foi

mantida entre 25 e 27°C e a umidade do solo em torno de 70%. A alimentação constituiu-se de folhas de alface,

proteína de soja texturizada e ração para cães, fornecidas alternadamente a cada três dias.

Os sons foram gravados em fita magnética SCOTCH, 219, tipo “low noise/high out put”. Utilizou-se

para os registros gravador SONY TC-730 e microfone direcional SONY C-76, mantido à distância de 10 cm da

superfície do solo. A estimulação para a produção de sons foi obtida mantendo-se a temperatura ambiente

sempre acima dos 25°C, induzida com o uso de estufa nos dias mais frios. Um casal por vez, com alimentação,

umidade e temperatura controladas, foi colocado em cubas de plástico com 30 cm de comprimento, 15 cm de

largura e 5 cm de altura, contendo uma camada de 2 cm de areia no fundo.

Os sons registrados foram analisados e grafados no Laboratório de Computação do IPCT. Utilizaram-

se microcomputador IBMPC acoplado à osciloscópio digital “Tektronix Digitizing Oscilloscope 114024” e

impressora “Hewlett Packard Laser Jet series II”, monitorado pelo programa “AS Y ST” idealizado por MARIS

& GLOCK (1990).

Nos oscilogramas (plano dinâmico, amplitude x tempo) foram obtidos o número de pulsos de cada

trinado, os intervalos e a longitude em centímetros de cada pulso. Nos espectros de frequência (plano harmôni-

co, amplitude x frequência) , o valor em que a amplitude é máxima. De suas análises resultaram a estrutura

dos trinados (número de pulsos de cada trinado) e os valores médios e/ou modais para frequência de modula-

ção de amplitude (taxa de pulsação), amplitude dos sons (intensidade) e fregiiência portadora.

A frequência de modulação de amplitude foi obtida aplicando-se a seguinte fórmula, idealizada por F.

S. Glock e M. B. Barros (com. pessoal): FMA = 127/d, onde d é a distância em centímetros de um pulso a

outro, em aquisições realizadas à 10 ms/div; o valor 127 é uma constante derivada do tamanho do quadro

obtido no osciloscópio em função do tempo. O valor resultante da aplicação desta fórmula é dado em Hertz

(Hz) ou pulsos/s. A fregüencia média de modulação de amplitude corresponde à média aritmética dos valores

encontrados para cada pulso em cada oscilograma. A amplitude dos sons foi obtida aplicando-se a fórmula:

I = 0,63.d.x, onde 0,63 é constante e representa o valor em centímetros de cada divisão do quadro obtido no

osciloscópio; d é a longitude em centímetros de cada pulso e x é a tensão de cada pulso em miliVolts (mV),

tomada acima do eixo principal. A amplitude média de um trinado corresponde à média aritmética dos valores

encontrados para cada pulso.

As espécies foram identificadas com base na literatura e por comparação com espécimens identificados

por D. A. Nickle ou T. J. Walker, ambos do DEUF. A sinonimia das espécies é apenas parcial para evitar

compilação extensiva.

As medidas, em milímetros, de comprimento e largura correspondem às dimensões entre os pontos

mais distantes da estrutura, enquanto as distâncias interocular, interocelar e ocular-ocelar equivalem à menor

distância entre elas e a distância interdactilal ao espaço entre as bases dos dáctilos tibiais. As abreviações

usadas no texto referentes a estas medidas são os comprimentos: CAA (asa anterior); CAB (abdômen, livre dos

cercos); CAE (área estridulatória = harpa); CAP (asa posterior); CC (corpo, livre dos cercos); CCE (cerco);

CDI (dáctilo tibial inferior); CDS (dáctilo tibial superior); CDTI (dáctilo tarsal 1); CDT2 (däctilo tarsal 2);

CFE (fila estridulatória); CEFA (espora fêmur anterior); CFP (fêmur posterior); CLTr (lâmina do trocanter);

COC (ocelar); CP (pronoto); CTrA (trocanter anterior); DID (distância interdactilal); DIO (distância interocular);

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

68 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

DIOC (distância interocelar); DOOC (distância ocular-ocelar); FE (fila estridulatória). Larguras: LAA (asa

anterior); LDI (dáctilo tibial inferior); LDS (dáctilo tibial superior); LDTI (däctilo tarsal 1); LDT2 (däctilo

tarsal 2); LOC (ocelar); LP (pronoto); LTrA (trocanter anterior, tomada em torno da linha mediana). A se-

qüencia das médias morfométricas é ?/S' respectivamente; as das formas braquípteras são especificadas.

Após cada média, entre parênteses, está indicado o valor do desvio padrão.

Neocurtilla Kirby, 1906

Curtilla SAUSSURE,1874 :341, non Oken, 1815; KIRBY, 1906 :2; CHOPARD, 1968 :454.

Neocurtilla KIRBY, 1906 :2; CHOPARD, 1968 :454.

Espécie-tipo. Gryllotalpa hexadactyla Perty, 1832, por designação de KIRBY, 1906.

Redescrição. Fêmures anteriores dotados de espora basal arredondada provida de

cerdas (fig. 6); margem posterior do último urosternito dos machos reta; aresta mesosternal

proeminente desde a base; trocanter anterior médio ou pequeno, raramente excede meta-

de do comprimento dos dáctilos tibiais, cultriforme ou lenticular, sem porção livre e

lâmina cortante (fig. 6); 4 dáctilos tibiais, 2 superiores móveis, 2 inferiores fixos; tímpa-

nos embutidos numa dobra da cutícula e perceptíveis apenas por uma fenda timpânica

(fig. 6). Fêmures posteriores não ou raramente excedem a metade do comprimento do

pronoto; garras glabras, somente no terço anterior pubescentes (fig. 9). Tégminas cobrem

metade do comprimento do abdômen ou menos (exceto N. robusta sp.n.); nervuras da

porção dorsal, nas fêmeas, distantes e irregulares; nervuras do campo lateral, tanto nos

machos quanto nas fêmeas, convergem para a base das tégminas (figs. 7,8,12,18,24). Os

cercos excedem o pronoto em comprimento. Nono segmento abdominal, às vezes tam-

bém o 8º, guarnecido dorsalmente com 2 séries laterais transversas de longas cerdas

dirigidas para dentro.

Diagnose. Neocurtilla distingue-se de Gryllotalpa pela disposição diferente das

nervuras do campo lateral das tégminas, pelo formato do processo basal dos fêmures

anteriores e pela posição do trocanter anterior. Em Neocurtilla os ramos da Sc são muito

curtos, irregulares e perpendiculares à borda da tégmina (figs. 7, 8); os fêmures anterio-

res apresentam um processo basal curto e aproximadamente semicircular e o trocanter

anterior não está exibido abaixo do processo do fêmur anterior (fig. 6). Em Gryllotalpa

os ramos da Sc são alongados, paralelos e mais ou menos convergentes para o ápice, os

fêmures anteriores apresentam um processo basal curvado e agudo, em forma de lâmina

e o trocanter anterior exibe-se abaixo do processo do fêmur anterior.

Composição e distribuição. Neocurtilla hexadactyla (Perty, 1832), México, Anti-

lhas e América do Sul; N. chiliensis (Saussure, 1861), Chile; N. cultriger (Uhlman, 1864),

EUA (Califórnia); N. claraziana (Saussure, 1874), Argentina, Uruguai; N. major (Saussure,

1874), EUA (Illindis, Kansas); N. maranona (Scudder, 1875), Peru; N. devia (Saussure,

1877), sul da África (Cabo, Lesoto); N. madecassa (Chopard, 1920), Madagascar; N.

acutata (Chopard, 1929), Equador; N. robusta sp. n., sul do Brasil.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 69

Chave para as espécies meridionais da América do Sul de Neocurtilla.

l. Trocanter anterior grande e triangular; corpo robusto; largura do pronoto maior

que 8 mm; tégminas maiores que metade do comprimento do abdômen; olhos

einouiarese nonsense. Sötnnebenizch II I. te boni do N. robusta sp. n.

Trocanter anterior pequeno e lenticular; corpo delgado; largura do pronoto

menor que 7 mm; tégminas menores que metade do comprimento do abdô-

mensolhosselipticosoieirenlares nada tank La ze Da. lc 2

2(1). Tibias posteriores com 4 espinhos longos e delgados na metade distal da margem

interna (CC 25 mm; CP 9 mm; tégminas lateralmente grisäceas; corpo amare-

lo; protörax com linha mediana escura; däctilos tarsais anteriores näo

emarginados na borda superior)... N. chiliensis (Saussure)

Tíbias posteriores com 8 espinhos longos e delgados somente no ápice

RARO EM o e A e E a DO DI ODE A us A 3

3(2). Dáctilos tibiais longos e delgados, com ápices agudos; machos e fêmeas com asas

posteriores normais ou braquípteros; comprimento médio do corpo 27-32mm

- ce Satie da qa ha A ASR ERES HLIVA VA det PRA A E de DEPENDE er Ve OR AMAR N. hexadactyla (Perty)

Dáctilos tibiais curtos com ápices obtusos; fêmeas braquípteras e machos geral-

mente ápteros; comprimento médio do corpo 25 mm.......... N. claraziana (Saussure)

Neocurtilla hexadactyla (Perty, 1832)

(Figs. 1-18, 82-85)

Gryllotalpa hexadactyla PERTY, 1832 :119, pr. 23, fig. 9, holótipo q procedente de Minas Gerais, Brasil (no

NMBS, HORN & KAHLE, 1936); SCUDDER, 1869 :27, pr. 1, figs. 17, 37,38; SAUSSURE, 1874

:344, pr. 8, fig. 22; GIGLIO-TOS, 1894 :43; 1895 :818; 1900 :8: REHN, 1917 :118; LIMA, 1938 :175;

SILVA et al., 1968 :9; BASTOS, 1977 :48.

Neocurtilla hexadactyla; KIRBY, 1906 :2; BRUNER, 1916 :351; REHN, 1917 b:118; HEBARD, 1924 :228;

HAYSLIP, 1943 :44; CHOPARD, 1954 :14; 1968 :454, sinonimia completa; FOWLER, 1987a :284;

FOWLER et al., 1985 :1076; 1986 :170; 1987c :470; FOWLER & PINTO, 1989 :144.

Redescrição. Corpo alongado, delgado, superfície lisa, sem granulações eviden-

tes. CC 29,93 (2,53) / 26,44 (2,91); braquipteros: CC 29,74 (3,44) / 26,37 (2,58).

Coloração em geral ferrugínea, às vezes, testácea-clara. Nervuras das tégminas

enegrecidas. Pronoto, às vezes, com manchas escuras próximas do ápice.

Ocelos elípticos, planos, raramente convexos; COC 0,50 (0,09) / 0,50 (0,04);

LOC 0,34 (0,05) / 0,32 (0,04); DIOC 0,91 (0,13) / 0,74 (0,08); DIO 2,04 (0,11) /1,82

(0,12); DOOC 0,41 (0,05) / 0,36 (0,04) (figs. 1, 2). Nas formas braquípteras: ocelos

circulares e convexos; COC 0,30 (0,04) / 0,27(0,05); LOC 0,22 (0,02) / 0,20 (0,03);

DIOC 1,12 (0,06) / 0,95 (0,07); DIO 2,09 (0,09) / 1,82 (0,07); DOOC 0,46 (0,05) / 0,43

(0,03) (figs. 15, 16).

Pronoto arredondado, curto, forte, com cicatriz superficial, alongada e irregular,

próxima ao meio; CP 8,02 (0,43) / 7,14 (0,41); LP 6,70 (0,35) / 5,99 (0,48) (figs. 3, 4).

Formas braquípteras: CP 8,48 (0,47) / 7,41 (0,49); LP 7,00 (0,54) /6,05 (0,33) (figs. 10, 11).

Porção terminal do lado inferior do fêmur anterior com uma excisão cortante e

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

10 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

aguda, não muito profunda; CEFA 1,06 (0,13) /0,90 (0,11) (fig. 6); braquípteros: 1,14

(0,12) / 0,94 (0,07) (fig. 17). Trocanter anterior, pequeno, lenticular, proeminente, densa-

mente coberto com cerdas; dáctilos tibiais divergentes, curvados para fora, os móveis

ligeiramente para baixo, delgados, longos, similares, decrescentes em comprimento;

dáctilos tarsais cultriformes, o 1º aproximadamente 2 vezes o comprimento do 2º; o 2º

com a margem superior grande e abruptamente dirigida para a base; garras aciculares

curtas, embotadas, igualando-se em comprimento à largura do 2º dáctilo lateral; tímpa-

nos em fenda (figs. 6, 17). Fêmures posteriores alongados, margem anterior levemente

curvada, a posterior reta; CFP 7,36 (0,41) / 6,71 (0,47); braquipteros: 7,05 (0,32) / 6,31

(0,41); tíbias posteriores sem espinhos laterais na margem interna, com 8 espinhos apicais,

4 longos no lado interno e 4 curtos externos; garras posteriores raramente igualando-se

ao artículo tarsal terminal em comprimento, a interna ligeiramente maior (figs. 9, 13).

Tégminas em repouso atingindo metade do CAB ou menos. FE dos machos apre-

senta poucos dentes, bem distanciados (figs. 5, 14). Asas posteriores geralmente metade

do CCE. CAA 10,89 (0,89) / 10,65 (0,86); LAA 6,01 (0,51) / 5,74 (0,69): FE 29 (2)

dentes: CFE 2,04 (0,16); CAE 4,84 (0,28); CAP 23,46 (1,81) / 20,91 (2,52) (figs. 7, 8);

braquípteras: CAA 8,09 (0,78) / 8,39 (0,70); LAA 4,42 (0,57) / 5,20 (0,55); FE 32 (2)

dentes; CFE 1,88 (0,14); CAE 4,17 (0,26); CAP 2,45 (0,42)/ 2,34 (0,78) (figs. 12, 18).

Abdômen com 9º, 8º e, as vezes, 7° segmentos fundidos dorsalmente e com fileiras

laterais longitudinais de cerdas longas e escuras. Cercos mais longos que o protórax em

comprimento; CCE 10,00 (1,21) / 10,32 (0,86); braquípteros: 9,17 (0,76) / 7,67 (0,58).

Diagnose. N. hexadactyla (CC 32/27 em média) diferencia-se de N. claraziana

pelos dáctilos tibiais longos, delgados de ápices agudos e, tanto machos como fêmeas

com formas braquípteras. N. claraziana é menor, 25 mm em média, dáctilos tíbiais ante-

riores curtos e obtusos, fêmeas braquípteras e machos geralmente ápteros.

Informações biológicas. Os adultos não se adaptaram bem às condições laboratoriais;

as ninfas, porém, demonstraram maior adaptabilidade, tendo-se obtido emergência de

adultos, após dois estádios a partir da data de coleta das ninfas. Todas as fontes alimenta-

res fornecidas foram aceitas, com preferência da alface. Dados laboratoriais sobre os

hábitos alimentares da espécie corroboram os de FOWLER et al. (1985, 1986) que con-

sideram a espécie omnivora; observaram que, na natureza, compete com S. borellii pelo

alimento disponível. Observou-se 2 posturas em laboratório, em janeiro, com 14 ovos

cada uma; estes ovos são subesféricos e de coloração acastanhada, com diâmetros médi-

os de 1,8 e 1,6 mm. HAYSLIP (1943) encontrou na natureza, de 30 a 70 ovos em cada

célula de incubação e observou que a fêmea protege seus ovos e filhotes. FOWLER &

PINTO (1989) observaram massas de ovos em câmaras, com 42 ovos, em média; após o

período de incubação, em média 20 dias para o Brasil, a fêmea continua no ninho, cui-

dando das ninfas por curto período.

Informações ecológicas. É comum no Rio Grande do Sul, principalmente em áreas

de horticultura e plantações de arroz. Em Mato Grande, Canoas, RS, onde a olericultura

é a principal atividade econômica da região, demonstrou ser a espécie mais abundante,

podendo causar prejuízos consideráveis, quando a densidade populacional é elevada,

principalmente de setembro a maio; afeta o sistema radicular não somente durante a

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 71

alimentação mas, também, durante a escavação. A grande quantidade de formas com

asas longas obtida nos meses de novembro e dezembro indica que existe pelo menos um

pico de revoada. Esta observação é compatível com dados obtidos em Santana do Livra-

mento, RS, e algumas localidades de São Paulo, onde ocorre somente um pico durante o

ano todo, no final da primavera e início do verão (FOWLER, 1987a; FOWLER, et al.,

1987e).

Informações sonogräficas. N. hexadactyla, forma braquiptera, emitiu sons de cha-

mada compostos por pulsos espaçados, com 14 (7) pulsos, em média. A frequência média

de modulação de amplitude foi de 34,67 (7,65) Hz. A amplitude média foi de 0,99 (0,1)

mV e a frequência portadora média de 2,26 (0,24) kHz (figs. 82, 83). Os sons de

cortejamento apresentaram-se com uma série de pulsos muito aproximados que podem

ou não ser precedidos por pulsos espaçados; o trinado completo, em média, com 24 (5)

pulsos; frequência média de modulação de amplitude de 58,62 (7,82) Hz; amplitude média

de 0,79 (0,2) mV e a frequência portadora média de 2,07 (0,23) kHz (figs. 84, 85). Sons

de chamada e cortejamento diferenciaram-se sonograficamente pelo número de pulsos

por trinado e frequência média de modulação de amplitude, maiores nos últimos. A fre-

quência portadora foi praticamente a mesma para ambos os tipos de sons, com variação

não significativa; o mesmo aconteceu com os valores para amplitude dos sons (figs. 82-

85).

Material examinado. BRASIL. Rio de Janeiro: Jacarepaguá, 15, 22 ,11.1.1979, K. Zanol col. (MCNZ).

Santa Catarina: Palhoça, 1 9, 30.X.1990, M.A.R. Pagani col. (MCPU). Rio Grande do Sul: Passo Fundo, 1

9 ,05.X1.1977,D.A. Gradin col. (CNPT); 19, 22.X11.1977, D.A. Gradin col. (CNPT); Serro Azul (atual Cerro

Largo), 29,1.1931, Pe. Buck col. (MAPA); 19, X.1938, Pe. Buck col. (MAPA); Torres, 19, 09.XII. 1964, Pe.

Buck col.(MAPA); 15,19, 04.XII. 1964, Pe. Buck col.(MAPA); Teotônia, 19, 02.X1.1984, K. L. Genrch col.

(FAVU); Santa Cruz do Sul, 19,24.X1.1990, C. L. Schmidt col. (MCPU); Santa Maria, 19, 11.X.1990, J. Mó

col. (DFCS); 192, 28.X.1990, D.R. Urquhart col. (DFCS); 1 2, 13.11.1977, F. A. Braga col. (DFCS); 19,

07.X.1990, J. C. Betal col. (DFCS); Venâncio Aires, 15, 28.X.1989, E. Hinterholz col. (MCPU); Charqueadas,

492, 15.XI.1941, Pe. Buck col. (MAPA); São Jerônimo, 1 S, 11.X1.1940, Pe. Buck col. (MAPA): (Fazenda

Capão), 1 GC‘, 03.X1.1982, M.E.L.de Souza col. (MCNZ); Osório, 42 , 14.11.1988, C.N. Nunes col. (MCPU); 1

2, 11.X1.1990, C.N.Nunes col. (MCPU); Tramandaí, 29, 15.X1.1990, E. Corseuil col. (MCPU); Gravataí, 1 9,

25. 1X.1989, A. Prusel col. (MCPU); Sapiranga (Picada Verão), 1 2, 08.X1.1989, R. Porcher col.(MCPU); São

Leopoldo, 1 9. VI.1940, Pe. Buck col. (MAPA); 19, 1.1948, Pe. Buck col. (MAPA); Canoas, 79,X.1956,G.

Zauza col.(MCNZ); Canoas (Mato Grande), 2 S , 19, 09.V1.1989, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 19,

30.1V.1990, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 19, 18.V.1990, PR. Silva col. (MCPU); 15, 10.VI.1990, M.G.

Lascombe col. (MCPU); 3 5, 08.VI1.1990, P.R. Silva col.(MCPU); 25, 369, 18.X1.1990, M.G. Lascombe

col. (MCPU); 9 5,33 9, 24X1.1990, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 4 5,26 92, 01.XTI.1990, A.T.Sılva

col.(MCPU); 45, 179, 06.XI1.1990, A.T. Silva col. (MCPU); Cachoeirinha (Estação Experimental do Arroz),

2 9, 22X1.1980, M.H. Galileo col.(MCNZ); 1 & ,2 9, 12.X1.1980, M.E.L. Souza col. (MCNZ); 2 9,

21.X11.1980, M.H. Galileo col.(MCNZ); Porto Alegre, 1 9, 24.X1.1942, J.P. da Costa Neto col.(IPAG); 1 9,

09.X.1961, A.C.Fonseca col.(FAVU); 1 9, 10.11.1966, A.Franson col.(FAVU); 19, 05.V.1964, Grillo col.

(FAVU); 19, 30.X1.1932, Pe.Buck col. (MAPA); 19, 27.11.1935, Pe.Buck col. (MAPA); 12.XII. 1988, 19,

M.A.R. Garcia col.(MCNZ); 1 9, 29.X1.1983, L. Jantsch col. (MCPU); 19, 10.X11.1989, N.A. Oliveira col.

(MCPU); 1S,05.V.1991, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 15, 15.X1.1989, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU);

192,17.X1.1957, D.C. Radaelli col. (FAVU); 19, XI1.1935, Pe. Buck col. (MAPA); Viamão IS, 23/25.X1.1979,

H.A.Gastal col. (MCNZ); 1 92, 23/25.X1.1979, M.E.L. de Souza col. (MCNZ); 3 9, 28/29.X1.1979, M.H.

Galileo col. (MCNZ); Guaíba, 1 S 3 2, 04.XII.1953, D.C. Redaelli col. (IPAG); 1 2, 15.XTI.1989, G.S.

Carvalho col.(MCPU); 39, X1.1990, G.S. Carvalho col. (MCPU); (Arroio Petim), 19, 11.1962, Pe.Buck col.

(MAPA); Barra do Ribeiro, 1 9, 02.X1.1989, M.Lucia col. (MCPU); Arroio Teixeira, 19,19.11.1985, F.C. Qua-

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

7 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

dros col. (MCPU); Pelotas, 1 9, 11.1X.1979, Fuggine col. (FZPU); Rio Grande (Estação Ecológica do Taim),

492, 13.X1. 1985, A. Lise col. (MCNZ); 3% ,01.X1.1986, M. Rosenau col. (MCNZ); 1 92, 01. XII.1986, A.D.

Brescovit col. (MCNZ); 9%, 02.X11.1986, M.C. Moraes col. (MCNZ); Santo Angelo, 12, 18.X1.1989 (FZPU);

São Borja, 1 9, 04.X1.1989 (FZPU); Alegrete, 1 9, 20.XII.1990 (FZPU); Giruá, 1 9, 02.X1.1989 (FZPU);

Itaqui, 1 9, 16.X1.1989 (FZPU); Uruguaiana, 1 9, 14.VIII.1985, Colussi col. (FZPU); 1 2, 09.X1.1987,

Marcos col. (FZPU): 1 2, 29.X1.1987, J.R. Stumm col. (FZPU). ARGENTINA. Misiones: Garabi, 1 9, 05.

V.1989 (MCPU).

Distribuição. Américas do Norte, Central e do Sul: Estados Unidos, México, Anti-

lhas, Suriname, Colômbia, Equador, Peru, Bolívia, Brasil (AM, PA, CE, BA, MS, MG,

RJ, SP, SC, RS). Argentina até Província de Santa Fé.

Neocurtilla robusta sp. n.

(Figs. 19-24, 80)

Etimologia. O nome específico é um adjetivo alusivo ao aspecto robusto do corpo,

em especial das tíbias anteriores.

Descrição (holótipo 2). Coloração geral ferrugínea-escura e sem manchas; cabeça

mais escura que o pronoto.

Ocelos sub-rotundos, pequenos, distantes do olho adjacente por cerca de 3 vezes

seu comprimento e do outro ocelo por aproximadamente 5 vezes seu comprimento; olhos

não muito grandes. distantes um do outro por cerca de 4 vezes sua largura (fig. 21).

Corpo grande e robusto, superfície pubescente (fig. 80). Pronoto alongado, retan-

gular, com 2 cicatrizes alongadas e longitudinais em torno da linha mediana (fig. 23).

Pernas anteriores grandes, robustas; trocanter grande, triangular; espora do fêmur

arredondada e com cerdas fortes. Dáctilos tibiais fortes e alargados na base, os móveis

alongados e obtusos no ápice, o 1º pouco maior que o 2°, os imóveis mais curtos, cerca de

2/3 do comprimento do 1º, o 3º mais longo que o 4º. Fenda timpânica alongada, visível

dorsalmente. Primeiro tarsômero curto, lâmina robusta, larga na base e relativamente

alongada; 2º tarsômero curto, estreito, sua lâmina mais larga que o artículo, cerca de 1/3

da largura e do comprimento do 1º; último tarsômero cilíndrico, garras aciculares, 1/3

mais longas que o comprimento do tarsômero. Primeiro tarsômero das pernas médias e

posteriores não muito longo, 2º igual à metade do comprimento do 1º, 3º aproximada-

mente igual ao 1º: garras em ambas aciculares, menores que o comprimento de seu artí-

culo (figs. 19-20). Fêmures posteriores alongados e relativamente estreitos; tíbias poste-

riores sem espinhos na margem interna, mas com 8 espinhos no ápice, 4 curtos externos,

4 longos internos (fig. 22).

Tégminas largas, cobrem cerca de 3/4 do comprimento do abdômen; asas posteri-

ores longas, atingem o ápice dos cercos (figs. 24, 80).

Abdômen alongado, robusto; lados do último e penúltimo urostergitos com fileira

transversa de cerdas longas dirigidas medianamente. Cercos alongados, mais longos que

o comprimento do pronoto (fig. 80).

Dimensões: COC 0,38; LOC 0,25; DIOC 1,50; DIO 2,75; DOOC 0,70; CP 10,00;

LP 8,8; CAA 13,00; LAA 6,0; CAP 24,44; CEFA 1,08; CFP 9,9; CAB 12,62; CCE

135:00:2C.26.57/

Variação. Algumas manchas irregulares pouco mais escuras no pronoto, acima das

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 73

cicatrizes medianas, e na face externa dos fêmures posteriores. Margem interna das tibias

posteriores inerme ou no terço terminal com 1 ou 2 espinhos curtos. COC 0,33 (0,05):

LOC 0,26 (0,04); DIOC 1,45 (0,07); DIO 2.64 (0,06); DOOC 0,67 (0,05); CP 10,17

(0,56); LP 8,63 (0,55); CAA 13,86 (0,68); LAA 5,73 (0,88); CAP 24,17 (0,75); CEFA

1,02 (0,06); CFP 9,67 (0,43); CCE 13,60 (1,95); CAB 13,87 (0,95); CC 29,36 (2,60).

Diagnose. N. robusta sp. n. distingue-se de N. hexadactyla por seu aspecto desen-

volvido e robusto, trocanter anterior grande, triangular, espora do fêmur anterior maior,

DIOC, DIO e DOOC maiores, pronoto grande, largo, subquadrangular e tégminas mais

alongadas, cobrindo 3/4 do comprimento do abdômen. N. hexadactyla tem corpo delga-

do, trocanter anterior lenticular, pronoto curto, forte e arredondado, COC e LOC maiores

(formas de asas longas) ou menores (formas braquípteras) e tégminas cobrem apenas

metade do comprimento do abdômen.

Material-tipo. BRASIL. Rio Grande do Sul. São Francisco de Paula, holötipo q, I. 1935, Pe. Buck

col., à seco, MAPA 7419. Parátipos: 3 9, mesmos dados do holótipo, MAPA 7388, MAPA 7392, MAPA 7413;

20, 20.1.1942, Pe. Buck col., MAPA 7406, MCPU 1977 (ex-MAPA, 7421).

Scapteriscus Scudder, 1868

Scapteriscus SCUDDER, 1868 :385; 1869 :6; SAUSSURE, 1874 :366; GIGLIO-TOS, 1894 :43; KIRBY,

1906 :1; BRUNER, 1916 :1; CHOPARD, 1968 :457; TOWNSEND, 1983 :179; GOROKHOV, 1984: 1645.

Espécie-tipo. Gryllotalpa oxydactyla Perty,1832, por designação de KIRBY, 1906.

Redescrição. Margem posterior do último urosternito do macho com proeminência

central robusta, triangular (exceto em S. borellii e S. riograndensis sp. n., reta e conti-

nua). Aresta mesosternal obsoleta ou limitada à porção posterior do segmento. Trocanter

anterior largo, porção livre igualando-se em comprimento aos dáctilos tibiais (raramente

tão longo, em S. oxydactylus), com lâmina cortante na porção inferior e aproximadamen-

te a mesma largura do ápice à base (fig. 31). Tíbias anteriores com 2 dáctilos, móveis (fig.

31). Tímpanos expostos na parte dorsal das tíbias anteriores; em S. oxydactylus existe

uma dobra bem acentuada da cutícula, mas esta nunca se fecha para formar uma fenda

como em Neocurtilla (figs. 30, 44). Fêmures posteriores mais longos que o protórax

(exceto em S. mexicanus, aproximadamente iguais e, em S. abbreviatus, mais curtos,

devido ao comprimento não usual do pronoto). Ápices do 1º artículo dos tarsos posterio-

res com um espinho de cada lado aguçado, robusto, o interno mais longo. Comprimento

dos artículos tarsais em conjunto igual à largura do pronoto; apenas o terço terminal das

garras tarsais posteriores glabro (fig. 26). Tégminas cobrem 2/3 do abdômen ou mais

(exceto em S. abbreviatus e S. variegatus, onde são mais curtas); nervuras das porções

dorsais, nas fêmeas, aproximadas e regulares (figs. 32, 39). Cercos não tão longos quanto

o pronoto (exceto em S. oxydactylus). Segmentos abdominais terminais sem fileiras de

cerdas dorsais.

Diagnose. Scapteriscus caracteriza-se por apresentar apenas 2 dáctilos tibiais e es-

pora basal da perna anterior, inserida no trocanter (fig. 31).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

74 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

Composição e distribuição. Scapteriscus didactylus (Latreille, 1804), Américas

Central e do Sul; S. oxydactylus (Perty, 1832), Peru, Bolivia, Brasil, Argentina; S.

tetradactylus (Perty, 1832), Peru, Bolívia, Argentina; S. mexicanus (Burmeister, 1838),

Mexico, Costa Rica, Colômbia, Brasil; 5. variegatus (Burmeister, 1838), Honduras, Co-

lömbia; S. parvipennis (Serville, 1839), Colômbia; S. abbreviatus Scudder, 1869, Brasil;

S. tenuis Scudder, 1869, Nordeste do Brasil; $. vicinus Scudder, 1869, Américas Central

e do Sul; S. borellii Giglio-Tos, 1894, Brasil, Paraguai, Argentina; S. leptodactylus Chopard,

1928, Índia, este do Paquistão; S. imitatus Nickle & Castner, 1984, Porto Rico, Venezuela,

Equador, Brasil; S. riograndensis sp. n., sul do Brasil.

Chave para as espécies de Scapteriscus (exceto S. leptodactylus)

|. — Tégminas menores ou iguais a metade do comprimento do abdômen................. 2

Tegminas mais longas que a metade do comprimento do abdômen ...................... 4

2(1). Asas posteriores vestigiais; (pronoto oval, mais longo que os fêmures pos-

teriores, de coloração acastanhada ou acinzentada, com várias pintas claras

e algumas escuras em torno da linha mediana).................... S. abbreviatus Scudder

Asas pöstenioresiabreviadast............. nen orou vi enero semp oa 3

3(2). Asas posteriores aproximadamente tão longas quanto as tégminas ....................

LEU SOS IA der ido eo DA oa ANS A A S. parvipennis (Serville)

Asas posteriores com comprimento 1,5 vezes o das tégminas .....................

WERNER TE Kr ER REN LEN ano SO USAR NO o O We S. variegatus (Burmeister)

4(1). Tégminas cobrindo aproximadamente 3/4 do comprimento do abdômen ............ 5

Tégminas cobrindo quase totalmente o abdômen; (corpo robusto, comprimento

do corpo/largura-do pronoto menor que 4) .........cencrersronnor emas nono aaa il

5(4). Distância interdactilal menor que metade da largura do däctilo inferior ............. 6

Distância interdactilal maior que metade da largura do däctilo inferior ................. Mi

6(5). Distäncia ocular-ocelar subigual ao comprimento do ocelo; distäncia interocular

2,0 mm ou mais; ocelos aproximadamente circulares; distäncia interocelar

maior que 1,0 mm, cerca de 2,5 vezes o comprimento ocelar; däctilos tibiais

muito aproximados, distância interdactilal quase imperceptível (0,05-0,15 mm);

irequencia-media” dos sons SDkHz zZ men a e cana S. vicinus Scudder

Distância ocular-ocelar menor que o comprimento do ocelo; distância interocular

menor que 2,0 mm, raramente maior; ocelos elípticos; distância interocelar

menor que 1,0 mm (0,8-1,0 mm), menor que 2 vezes o comprimento do ocelo;

distância interdactilal não tão estreita (0,15-0,3 mm); frequência média dos

SIDES CORRETO EE Bs LL o re ac N S. imitatus Nickle & Castner

7(5). Distância interdactilal aproximadamente igual à largura do däctilo inferior

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 78

8(7). Ápice dalâmina dojtrocanterem;gancho )..acsmicapnissssabastamisiiss S. tenuis Scudder

Apice da lâmina do trocanter truncado; (último tarsômero posterior largo, largura

igual a metade do comprimento; distância ocular-ocelar menor que a largura

emceld)s&sn4u..2 Benson SALES rar. S.mexicanus (Burmeister)

9(7). Distância ocular-ocelar igual ou menor que a largura do ocelo....................... ii... 10

Distância ocular-ocelar maior que a largura do ocelo; (lâmina do trocanter truncada

no ápice; pronoto de coloração marrom ou cinza-escuro dorsalmente e clara

nos lobos, podendo ser uniforme, com quatro pintas claras | formando os

cantos de um trapézio ou com manchas claras alargadas contíguas com a

coloração clara dos lobos; frequência média dos sons 2,7 kHz) .......................

ce 2 NEE S. borellii Giglio-Tos

10(9). Distäncia ocular-ocelar aproximadamente a largura do ocelo; comprimento

ocelar + 0,65 mm; distância interocelar maior que 1,0 mm; distância interocular

maior que 2,2 mm; ápice da lâmina do trocanter arredondado; coloração do

corpo castanho-escuro; pronoto quadrangular, marrom-escuro, uniforme ou

com 4 pintas claras em torno linha mediana formando os ângulos de um

quadrado; frequência média dos sons 3,2 kHz ........... S. didactylus (Latreille)

Distância ocular-ocelar menor que a largura do ocelo; comprimento ocelar 0,45-

0,55 mm; distância interocelar 0,8-1,0 mm; distância interocular 1,6- 2,0 mm;

ápice da lâmina do trocanter truncado; coloração do corpo muito clara; pronoto

sub-retangular, uniforme ou com manchas escuras em torno da linha mediana;

irequencia média 'dos!sons 2/0 kHz 1... 2 REN. S. riograndensis n. sp.

11(4). Ápice da lâmina do trocanter subtruncado e curvado para fora; pronoto oval com

algumas manchas escuras em torno da linha mediana; coloração do corpo

testácea-clara; (CC 40-50 mm; fêmures posteriores com uma mancha escu-

zadıstaleoutra obsoleta no centro; ocelos ehpticos) “tha. cabra err setas tua ENENNN

REN REDONDO EL CS TR RIA USER S. oxydactylus (Perty)

Apice da lâmina do trocanter arredondado; pronoto quadrangular de coloração

testácea com manchas mais escuras em torno da linha mediana; (distância

ocular-ocelar aproximadamente igual à largura do ocelo; distância interdactilal

aproximadamente igual à metade da largura do dáctilo inferior; fila estridulatória

com mais de 90 dentes, muito aproximados) ................. S. tetradactylus (Perty)

Scapteriscus abbreviatus Scudder, 1869

(Figs. 25-31)

Scapteriscus abbreviatus SCUDDER, 1869 :14, pr. 1, figs. 8, 20, holótipo 5 , Pernambuco, Brasil, J.C.

Fletcher col., MCZC; GIGLIO-TOS, 1897 :46; KIRBY, 1906 :2; REHN & HEBARD, 1916 :277, pr. 14,

figs.17-19; CHOPARD, 1968 :459; BASTOS, 1977 :48; SANTOS et al., 1977 :53; NICKLE & CASTNER,

1984 :457; FOWLER et al., 1986 :160; FOWLER, 1988 :4, fig. 1.

Redescrição. Coloração acastanhada, escura dorsalmente, fulvo-clara inferiormen-

te, amplamente manchada com pintas fulvo-pálidas; no tórax com pintas laterais gran-

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

76 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

des; sobre o abdômen com fileiras inconspícuas de pintas medianas e submedianas e uma

fileira lateral mais larga de pintas claras. Cabeça enegrecida, com faixa estreita, clara ao

redor dos olhos e uma larga entre os olhos; com listras fulvo-pálidas laterais, medianas e

submedianas. Pronoto com pintas claras e escuras em torno da linha mediana (fig. 25).

Nervuras das tégminas fulvo-escuras, escuras ao longo da junção das áreas média e

costal e na união de muitas nervuras próximas da borda interna, nos machos.

Corpo-eurto: CC 21:57 CABRIGAS!

Ocelos pequenos, circulares, subplanos, distantes do olho adjacente por duas

vezes seu diâmetro e do outro ocelo por aproximadamente cinco vezes seu diâmetro;

COC 0 DIOC TF OC T72 o 0C032 the 27:

Pronoto ovóide, muito longo em relação ao comprimento do corpo; CP 8,70; LP

6,40 (fig. 25).

Trocanter anterior longo, reto, com ângulo externo inferior um pouco torcido para

fora; ângulos superior e inferior aproximadamente paralelos, arredondados na extremi-

dade; CTrA 3,95 e LTrA 0,80. Lâmina do trocanter curta e arredondada no ápice; CLTr

1,00 (fig. 31). Margem inferior do trocanter irregularmente armada com espinhos delga-

dos. Dáctilos tibiais curvados um pouco para fora, o superior levemente para baixo, ligei-

ramente divergentes, longos, não delgados; o inferior tão robusto quanto o superior, mo-

deradamente arredondados no ápice; CDS 2,90 e LDS 0,80; CDI 2,25 e LDI 0,75. Däctilos

tibiais separados na base por mais da metade da largura do dáctilo inferior; DID 0,45.

Dáctilos laterais do tarso, especialmente o superior, longos, delgados; o superior reto, o

inferior curvado um pouco para cima; CDT1 1,75 e LDTI 0,60; CDT2 1,00 e LDT2

0,40. Garras aciculares, longas, delgadas, a superior ligeiramente maior, cerca de 3/4 o

comprimento do último tarsômero (fig. 31). Tímpanos quase que totalmente expostos, a

margem da cutícula muito estreita (figs. 30, 31). Margem interna da tíbia posterior com

quatro espinhos longos e delgados, que aumentam em comprimento em direção ao ápice

da tíbia; o ápice é também armado com 1 espinho curto e 2 longos no lado interno e 3

curtos no lado externo. A garra interna, pouco mais longa, é igual em comprimento ao

último tarsômero (fig. 26).

Tégminas extremamente curtas, em repouso atingem a metade das tíbias posterio-

res (fig. 29): CAA 6,80 e LAA 4,60. FE com muitos dentes, muito aproximados, 76 no

exemplar examinado; CFE 2,00; CAE 2,50; (fig. 28). Asas posteriores abortivas, não

excedendo a metade do comprimento da tégmina; CAP 3,00.

Margem posterior do último urosternito do macho com uma proeminência central

triangular. Cercos com aproximadamente 2/3 do comprimento do pronoto; CCE 4,80.

Diagnose. S. abbreviatus diferencia-se facilmente das demais, pelo tamanho rela-

tivo do pronoto, maior que o comprimento dos fêmures posteriores, associado ao tímpa-

no exposto, tégminas curtas e padrão de manchas circulares do pronoto (fig. 25).

Informações biológicas e ecológicas. De acordo com FOWLER et al. (1985) é

principalmente herbívora. Abundante em todo litoral brasileiro, com distribuição geral-

mente restrita ao litoral, desde MA até RS (FOWLER, 1988 e H.G. Fowler com. pesso-

al), foi encontrada também no interior de SP (FOWLER et al., 1986). Vive sobretudo na

areia e nas frestas entre pedras de calçamento das cidades praianas (H.G. Fowler com.

pessoal).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... HIT:

Informacöes sonogräficas. Näo se tem conhecimento sobre sons de chamada, em-

bora os machos possam produzir um som de cortejamento especial, definido como, “ran-

ge-close courtship song” (NICKLE & CASTNER, 1984). FOWLER et al. (1986) tam-

bém observaram que não existe o chamado característico dos machos para atrair as fême-

as.

Material examinado. BRASIL. São Paulo: Bertioga, 1 5, 06.11.1984, H. G. Fowler col., T. J. Walker,

det., MCPU 1669 (ex-CPHF 0304-1).

Distribuição. Américas do Norte, Central e do Sul: desde Flórida e Georgia (EUA),

México, Antilhas, Bolívia, Brasil (MA, CE, RN, PB, PE, AL, SE, BA, ES RJ, SP, SC,

RS), Paraguai e norte da Argentina, até a Província de Tucumán.

Scapteriscus borellii Giglio-Tos, 1894

(Figs. 32-43, 88-93)

Scapteriscus borellii GIGLIO-TOS, 1894 :45, figs. 12, 15, sintipos, 1S e 192, Alfredo Borelli col., de Colonia

Riso, próximo ao Rio Apa, Paraguai (no MIZT, HORN & KAHLE, 1935); 1897 :46; REHN, 1913 :376;

1915 :289; 1917 :122: REHN & HEBARD, 1916 :280; BRUNER, 1916 :352 (chave), :353;

HEBARD, 1924 :225; CHOPARD, 1956 :243; 1968 :458; SILVA et al., 1968 :10; NICKLE & CASTNER,

1984 :461; FOWLER et al., 1985 :1076; 1986 :162; FOWLER et al., 1987a :284; 1987b | :44;

FOWLER,1988:5, fig. 2.

Scapteriscus acletus REHN & HEBARD, 1916 :279, pr. 14, figs. 8-11, holötipo S e alótipo 9, Hardville,

Ware Country, Georgia, EUA, 15.V.1915, M. Hebard col., em horta, o d Coleção Hebard nº 406 (no

ANSP, HORN & KAHLE, 1935); parátipos: 26 Je 259, 15-31.V.1915, W. Walker col., mesma localida-

de; HAY SLIP,1943 :33; CHOPARD, 1968 :459; ULAGARAJ & WALKER, 1973 :1278; 1975 :530;

ULAGARAJ, 1976 :299: BASTOS, 1977 :48; NICKERSON et al., 1979 :438; FORREST, 1983 :797;

NICKLE & CASTNER, 1984 :460; BENNET-CLARK, 1987 :383. Syn. n.

Redescrição. Cabeça escura com três listras longitudinais claras; corpo cinza-escu-

ro, inferiormente fulvo-testáceo. Pronoto cinza-escuro, uniforme ou manchado ou com 4

pontos claros, lateralmente pálido nos lobos; com polimorfismo quanto ao padrão de

coloração do pronoto, existindo as formas escura ou uniforme (“dark”) (fig. 40), man-

chada (“mottled””) e a forma com 4 pontos claros, formando os cantos de um trapézio

(“four dott”) (fig. 38). Fêmures posteriores com manchas escuras e padrão característico

(figs. 33, 41).

Corpo alongado; CC 27,85 (2,22) / 28,55 (2,98).

Ocelos elípticos, distantes um do outro por uma a 1,5 vezes seu diâmetro maior e,

do olho adjacente, por um espaço maior que o diâmetro menor do ocelo (fig. 36); COC

0,42 (0,05)/ 0,41 (0,04); DIOC 0,99 (0,08) / 0,98 (0,08); DIO 1,79 (0,12) / 1,84 (0,11);

DOOC 0,23 (0,03) / 0,25 (0,03).

Pronoto retangular; CP 7,92 (0,65) / 8,87 (0,86); LP 6,27 (0,43) / 6,97 (0,65) (figs.

38, 40).

Trocanter anterior alongado, lâmina alongada estendendo-se por 3/4 da porção li-

vre, ápice reto ou truncado; CTrA 4,13 (0,44) / 4,54 (0,34); LTrA 0,98 (0,18) / 1,10

(0,15); CLTr 1,28 (0,16) / 1,45 (0,20). Dáctilos tibiais longos, delgados, separados na

base por um espaço maior que a metade da largura do dáctilo inferior (figs. 37, 43); CDS

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

78 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

2,97 (0,50) / 2,91 (0,28); LDS 0,84 (0,09) / 0,89 (0,08); CDI 2,36 (0,45) / 2,35 (0,21);

LDI 0,78 (0,12) / 0,91 (0,11); DID 0,41 (0,07) / 0,54 (0,08); CDT1 1,94 (0,35) / 2,00

(0,25); LDTI 0,71 (0,11) / 0,68 (0,08); CDT2 1,24 (0,28) / 1,35 (0,10); LDT2 0,32

(0,07) / 0,42 (0,07). Timpanos bem visiveis, em vista dorsal, com aproximadamente 3/4

de seu diâmetro exposto (fig. 34). Margem interna das tíbias posteriores com 5 espinhos

longos, delgados; ápice com 3 espinhos longos no lado interno e 3 curtos no lado externo

(figs. 33, 41). CFP 9,09 (0,63) / 9,28 (0,62).

Tégminas cobrindo 3/4 do abdômen; CAA 14,67 (0,97) / 15,20 (1,28); LAA 6,34

(0,54) / 6,86 (0,76). Presença de nervuras transversais entre o espaço interno das nervuras

médias e mediastinas nas tégminas das fêmeas (figs. 32, 39, 42). FE com 66 (5) dentes

(fig. 35); CFE 2,58 (0,18); CAE 4,25 (0,29) (fig. 32). Asas posteriores atingindo além

das extremidades dos cercos; CAP 20,52 (1,34) /20,57 (1,70).

Último urosternito do macho reto, sem proeminência, em sua margem posterior.

Cercos com aproximadamente 2/3 comprimento do pronoto; CCE 5,89 (0,68) / 6,30

(0,74).

Diagnose. S. borellii diferencia-se de S. vicinus e S. didactylus pela distância

interdactilal que é maior e pelo ápice truncado da lâmina do trocanter; de S. riograndensis,

pelos ocelos menores, pela distância ocular-ocelar maior, pela coloração mais escura e

padrão de manchas característico do pronoto e dos fêmures posteriores. Separa-se de

todas pelas fregiiências portadora e de modulação de amplitude do som de chamada.

Informações biológicas. Em laboratório observou-se a cópula: o macho emite sons

de cortejamento incessantemente movimentando-se dentro do túnel; a fêmea, também

dentro do túnel, vai se movimentando até colocar-se sobre o macho; ao atingir esta posi-

ção, que dura poucos segundos, o macho libera uma porção de sêmen que a fêmea reco-

lhe abrindo as valvas de seu aparelho genital; após a cópula o macho cessa a emissão de

sons. As fêmeas realizaram posturas no período de dezembro a fevereiro. Em 4 posturas

foram colocados 12, 16, 18, e 23 ovos de contorno elíptico e coloração leitosa ou

acinzentada, com diâmetros médios de 2,6 e 1,6 mm. De acordo com HAYSLIP (1943)

fêmeas de S. acletus pôem 1a 50 ovos, 22 em média, por célula de incubação e, como

característica, não cuidam seus ovos e filhotes. Observou-se que as ninfas, ingerem as

exúvias após a muda. Após o período de acasalamento, que pode durar até uma semana

com os machos produzindo sons de cortejamento, as fêmeas, via de regra, matam os

machos e os devoram, confirmando o canibalismo observado por FOWLER et al. (19874),

fator de mortalidade natural importante na espécie. Por esta razão tornou-se necessária a

criação individualizada e a manutenção controlada de casais.

Informações ecológicas. Espécie abundante em todo Rio Grande do Sul. Em cole-

tas realizadas no distrito de Mato Grande, município de Canoas, RS, em área de

horticultura, foi a segunda mais abundante. É comum também em floriculturas e nas

proximidades de pequenos lagos, rios e lagunas das praias. De acordo com FOWLER et

al. (1985), a espécie é principalmente omnívora, a maior parte de sua dieta composta de

partes animais. Observou-se, ainda, que esta espécie foi a que melhor se adaptou às con-

dições laboratoriais, aceitando bem o alimento que pode ser fornecido a cada dez dias.

Foram encontrados, na natureza, muitos exemplares enterrados em amontoados de adu-

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 79

bo de origem animal, convivendo com grandes ninhos de formigas lava-pés. FOWLER

et al. (1987b) já haviam observado o hábito predatório de S. borellii sobre Solenopsis sp.

(Hymenoptera, Myrmicinae). Encontrou-se, ainda, cicindelíneos (Coleoptera, Carabidae)

em suas galerias, em concordância com observações realizadas pelos autores.

Informações sonográficas. Em 47 casos gravados, os sons de chamada foram pro-

duzidos, em média a cada 2 min. podendo variar os intervalos entre 45 s e 8 min. Esses

sons apresentaram trinados completos com média de 8,6 pulsos e modas em 4e 6

pulsos, podendo, no entanto, apresentarem até 22 pulsos. A frequência média de modu-

lação de amplitude foi de 53,3 Hz, com modas em 50 e 52 Hz. A frequência portadora

média foi de 2,78 kHz, com moda em 2,8 kHz e a amplitude média de 3,65 (2,2) mV

(figs. 88-91). Os sons de cortejamento apresentaram trinados com 9,15 pulsos, em mé-

dia, estando o valor modal em 10 pulsos. A frequência média de modulação de amplitude

destes sons foi de 79,93 Hz, com modas em 79 e 81 Hz. A freqiiência portadora média

foi de 2,74 kHz, com moda em 2,7 kHz, praticamente a mesma dos sons de chamada. Os

sons de cortejamento apresentaram, em média, 3,7 trinados/s, ou seja, o ritmo dos sons de

cortejamento é muito mais rápido que aquele dos sons de chamada (figs. 92, 93). As

diferenças entre sons de chamada e cortejamento encontram-se basicamente na estrutura

dos trinados e nos valores da frequência de modulação de amplitude, seja pelo número de

pulsos de cada um, seja pelo ritmo com que estes trinados são emitidos.

Discussão. NICKLE & CASTNER (1984) discutiram a provável sinonimia de S.

borellii e S. acletus Rehn & Hebard, 1916 mas propuseram que ambas fossem conside-

radas espécies distintas, uma vez que formas manchadas, que acreditavam ser comuns no

sul da América do Sul, não foram capturadas em experimentos realizados na Argentina

com armadilhas sonoras. Admitiram, porém, que a espécie foi transportada do sul até o

norte da América do Sul e introduzida até o sul dos EUA, onde tornou-se praga para

agricultura. O fato de espécimens manchados não terem sido coletados na ocasião, pode

ser devido à sua eventual ausência no local, uma vez que, conforme se tem observado,

estas formas não são fregiientes. Do material examinado, não foi encontrado um só exem-

plar manchado, forma presente no Rio Grande do Sul, segundo FOWLER et al. (1986).

Por outro lado, verificou-se a ocorrência de somente 6 exemplares com pronoto escuro e

uniforme (“dark”) (figs. 40-43). É possível que as formas uniforme e manchada sejam

mais raras, bem como sua periodicidade nesta região. Na América do Norte, S. acletus é

a denominação mais comumente utilizada, contudo a única diferença entre ambas é que

S. borellii foi descrita para a América do Sul, a partir de exemplares com padrão quatro

pontos para o pronoto e S. acletus, da Georgia, a partir de espécimens com padrão man-

chado para o pronoto. Os dados sonográficos obtidos em laboratório estão muito próxi-

mos daqueles verificados por ULAGARAJ (1976) para S. acletus forma manchada, na

natureza, a temperaturas entre 18 e 32°C, em que a fregiiência média foi de 2,6 kHz e a

taxa de pulsação média de 55 Hz, em 70 casos analisados. O autor observou uma fre-

quência mínima de 2,4 kHz e máxima de 2,8 kHz, valores exatamente iguais aos obtidos

no presente trabalho. Os mesmos valores foram obtidos por BENNET-CLARK (1987).

FOWLER et al. (1986) e FOWLER (1987a) já haviam sugerido que S. borelliie S. acletus

talvez representassem a mesma espécie, pois ambas respondem ao mesmo som de cha-

mada. Com base, principalmente, em dados sonográficos, é proposta a sinonimização

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

80 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

de $. borellii com S. acletus.

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: Torres, | 9, 04.X1.1964, Pe.Buck col (MAPA);

Cerro Azul (atual Cerro Largo), 2 9 “dark”, X.1938, Pe. Buck col.(MAPA); Canela, 1 9, 01.X1.1959, E.

Corseuil col., Nickle det.(FAVU); Santa Maria, 1S', “dark”, 03.1X.1990, L. Vogt col. (MCPU 1667, ex-DFCS);

19 “dark”, 05.X.1990, M.A. Luzza col.(MCPU 1668, ex-DFCS); Triunfo (Arroio Bom Jardim), 1 &,

06.X11.1979, (MCNZ); São Pedro do Sul, 1 9, X1.1933, M.V. Parseval col.(IPAG); Capão da Canoa (Capão

Novo), 19,03.X1.1989, M.E.L. de Souza col. (MCNZ); Xangrilä, 19, 18.1.1991, M.C. Lascombe col.(MCPU);

Imbé, 19, 18.1.1991, D.C. Lascombe col. (MCPU); Osório, 1 S, 30.1V.1991, E. Corseuil col. (MCPU); São

Leopoldo, 19, X.1943, Pe. Buck col.(MAPA); Sapucaia do Sul, 1%, 21.X1.1990, M.G. Lascombe col. (MCPU);

Alvorada, 19, 01.11.1991, M.G. Lascombe col. (MCPU); 39, 23.1.1991, M.G.Lascombe col. (MCPU); Cano-

as (Mato Grande), 1 S', 12.V.1990, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 255, 1419,01.XI-16.XI1.1990, V.L.C.-

Lascombe col. (MCPU); Porto Alegre, 19, 20.X.1927, Pe. Buck col.(MAPA): 1%, 06.X11.1936, Pe. Buck col.

(MAPA): 3%, 14.X.1966, Pe. Buck col. (MAPA); 16, 10.X1.1966, O.M.Fonseca col.(IPAG); 19, 30.1X.1987,

W. Paiva col. (MCPU); 12, 09.X.1989,N. Barreto col. (MCPU); 19, 08.1.1991, K.S. Feijó col.(MCPU); 19,

23.V11.1989, V.L.C.-Lascombe col.(MCPU); 6 5,2 9, 15.X.1989, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 2 ©,

03.11.1990, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 1 5,1 9, 17.V1.1989, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 1 &,

V111.1956, M. Palova col. (MCNZ); Viamão (Águas Belas), 2 9, 28/29.X1.1979, M.H. Galileo col. (MCNZ);

IS, 4 9, 24/20.X.1980, H.A. Gastal col. (MCNZ); Guaíba, 19, 05.1.1988, G.S. Carvalho col. (MCPU); São

Lourenço do Sul, 1 9, 12.1.1990, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 17,2 2, 02.11.1990, (MCPU); Pelotas, 1 9,

02.X11.1990, D.V. Farias col. (MCPU); Rio Grande (Estação Ecológica do Taim), 19, 13.X1.1985, A. Lise col.

(MCNZ); Rosário do Sul, 29, X.1955, A. Duarte col., D.A. Nickle det. (FAVU); Alegrete, 19, 20.X1.1990, C.L.

Domeles col. (MCPU); 1 < , 25.XI1.1990, P. Silva col. (FZPU); Santana do Livramento, 1 9 “dark”, M.G.

Lascombe col.(MCPU): Itapitocaí, 19 , 17.X1.1989 (FZPU); Uruguaiana, 1 9, 08.X1.1987, D.A. Brasil col.

(FZPU); 19, 23.X1.1989, A. Brasileira col. (FZPU); 19, 30.X11.1990, D.L. Kroef col. (FZPU). URUGUAI:

Rivera. Chapéu, 19 “dark”, 30.1.1984, A .Silveira-Guido col.

Distribuição. Américas do Norte e do Sul: sul dos EUA, Venezuela, Colômbia,

Equador, Peru, Bolívia, Brasil (PA, CE, RN, PB, PE, MT, GO, MG, RJ, SP, SC, RS)

Paraguai, Argentina e Uruguai.

Scapteriscus oxydactylus (Perty, 1832)

(Figs. 44-51)

Gryllotalpa oxydactyla PERTY, 1832 :118, pr.23, fig. 7, holötipo q, Minas Gerais, Brasil (no NMBS, HORN

& KAHLE, 1936).

Scapteriscus oxydactylus; SCUDDER, 1869 :7, pr. 1, figs. 2, 21; WATTENWYL & REDTENBACHER, 1892

:216; GIGLIO-TOS, 1897 :46; 1900 :8; KIRBY, 1906 :1; BRUNER, 1916 :352 (chave), 353; REHN, 1917

:121; BIEZANKO etal., 1949 :167, 175, 197; CHOPARD, 1954 :13; 1956 :243; 1968 :457; SILVA etal.,

1968 :10; CASTNER & NICKLE, 1988 :61.

Redescrição. Cabeça anteriormente de coloração escura, enegrecida entre os ocelos

e com linhas laterais, medianas e submedianas empalidecidas; pronoto testáceo-claro

com grandes manchas escuras medianas (fig. 45); abdômen fulvo-testáceo; nervuras das

tégminas pouco escuras; pernas uniformemente testáceas claras, a superfície externa su-

perior do fêmur posterior com mancha escura próxima do ápice e outra obsoleta próxima

do centro (fig. 47).

Corpo grande, alongado, robusto; é a maior espécie do gênero; CC 44,22 /39,42.

Ocelos grandes, elípticos, levemente convexos; cada um distante do olho adjacente

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 81

por sua própria largura e do outro ocelo por pouco mais que seu comprimento (fig. 46).

COC 0,80 / 0,67; DIOC 1,22 / 1,12; DIO 2,87 / 2,65; DOOC 0,37 / 0,32 (fig. 46).

Pronoto ovóide, alongado, largo na base; CP 13,42 / 13,72; LP 11,90 / 11,62 (fig. 45).

Trocanter anterior näo muito longo, largo, ligeiramente curvado para fora no

ängulo externo inferior; porgäo livre maior que os däctilos tibiais em comprimento; lados

subparalelos, o inferior reto próximo do ápice, o superior um pouco convexo; ápice ligei-

ramente arredondado; CTrA 5,90 / 5,75; LIrA 2,40 / 2,25. Lâmina do trocanter subtruncada

no ápice, curta e curvada para fora; CLTr 1,40 / 1,25. Dáctilos tibiais longos, delgados,

fortemente curvados para fora e levemente para dentro, um pouco divergentes, separados

na bases por um espaço igual ou maior que a largura de qualquer dáctilo; DID 1,00 em

ambos os sexos (fig. 51). Dáctilo tibial superior longo, um pouco mais corpulento que o

inferior; CDS 6,40 / 5,40; LDS 1,50 / 1,25; CDI 5,00 / 4,35; LDI 1,25 / 1,00. Dáctilos

laterais do tarso muito longos e delgados, curvados para fora; CDT1 4,30 / 3,20; LDT1

1,10 / 1,00; CDT2 3,05 / 2,40; LDT2 0,70 / 0,65. Garras aciculares igualando-se ao

ültimo articulo tarsal em comprimento (fig. 51). Timpanos quase que totalmente escon-

didos sob a dobra da cutícula, pouco perceptíveis em vista dorsal (fig. 44). Fêmures

posteriores mais longos que o pronoto; CFP 16,76 / 14,68 (fig. 47). Porção interna da

tíbia posterior com 5 espinhos longos, delgados que aumentam em comprimento em

direção ao ápice; ápice com 1 espinho curto e 2 longos no lado interno e 3 curtos no lado

externo. Último artículo tarsal das pernas posteriores longo, delgado, assim como as

garras, a externa curta, igual ao comprimento do artículo tarsal terminal (fig. 47).

Tégminas em repouso ultrapassam o ápice dos fêmures posteriores e quase ultra-

passam o ápice do abdômen (figs. 49, 50); CAA 29,72 / 27,58; LAA 13,48 / 11,44. FE

com 70 dentes, grandes, pouco inclinados e espaçados (fig. 48); CFE 4,00; CAE 6,75

(fig. 49). Asas posteriores, em repouso, estendendo-se além da extremidade dos cercos;

CAP 38,42 / 32,14.

Margem posterior do último urosternito do macho com uma proeminência central

triangular. Cercos muito longos e delgados, igualando-se ou ultrapassando o pronoto em

comprimento; CCE 14,40 / 12,30.

Diagnose. S. oxydactylus diferencia-se das demais espécies por ser maior e apre-

sentar a lâmina do trocanter curta e curvada para fora, como que uma calha, mas não em

gancho.

Informações biológicas. CASTNER & NICKLE (1988) observaram estes animais

vivendo em praias aluviais do Rio Amazonas até 90 cm de profundidade, na maioria das

vezes solitários. De acordo com H.G. Fowler (com. pessoal) parece ser bastante sensível

ao teor de húmus do solo, daí sua preferência por matas.

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: Santa Maria, 1 S, 02.X.1976, J. Machado col.,

(MCPU 1673, ex-DFCS); Caverá, 1 9, 18.1.1982, E. A. Rocha col., (MCPU 1674, ex-DFCS).

Distribuição. América do Sul: Guianas, Venezuela, Peru, Brasil (AM, RN, MG,

RS), Bolívia, Paraguai, Argentina até Rosário, Província de Santa Fé.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

82 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

Scapteriscus riograndensis sp.n.

(Figs. 52-61, 81, 94-99)

Etimologia. O nome específico é um adjetivo referente ao Estado da localidade-

tipo.

Holótipo 5 . Coloração geral testácea muito clara. Cabeça com seis faixas escuras,

largas, longitudinais, as duas internas mais alongadas estendem-se até os ocelos, as ou-

tras sucessivamente mais curtas até o ângulo dos olhos. Pronoto manchado, com 2 cica-

trizes medianas escuras, alongadas e longitudinais; ao seu redor duas manchas irregula-

res e grandes apicais, duas pequenas e transversas próxima do meio e outras quatro apro-

ximadamente circulares na base. Fêmures posteriores sem manchas na margem externa.

Nervuras também de coloração clara (fig. 81).

Corpo grande, alongado (fig. 81).

Cabeça com ocelos alongados, elípticos, levemente convexos, cada um distante do

olho adjacente por aproximadamente 1/3 de seu comprimento e menos que sua própria

largura e do outro ocelo por cerca de 1,5 vezes seu comprimento. Olhos grandes, distan-

tes um do outro por 1,5 vezes sua largura (figs. 55, 56).

Pronoto alongado, sub-retangular (figs. 52, 53).

Pernas anteriores com trocanter alongado, lados paralelos, lâmina estendendo-se

por metade de seu comprimento, extremidade reta (fig. 61). Tímpanos bem visíveis

dorsalmente, 2/3 de sua superfície exposta (fig. 58). Dáctilos tibiais longos e delgados, o

superior mais estreito que o inferior, separados na base por quase a largura do dáctilo

superior. Primeiro tarsômero trapezóide, com dáctilo alongado; 2º quadrangular, metade

do comprimento e largura do 1º, com dáctilo 2/3 da largura e comprimento do 1º; 3º

alongado, 1,5 vezes o comprimento do 2º: garras aciculares tão longas quanto seu tarsômero

(fig. 61). Fêmures e tíbias medianas subiguais em comprimento; o 1º tarsômero alonga-

do, 2 vezes o tamanho do 2º; o 3º, 1,5 vezes o comprimento do 2º; garras tão longas

quanto o 2º. Fêmures posteriores alongados; tíbias com 3/4 do CFP e 5 espinhos delga-

dos na margem interna que aumentam em tamanho em direção ao ápice; ápice com 3

espinhos longos internos e 3 curtos externos; 1º tarsômero alongado, subcilíndrico, com

2 espinhos no ápice, um interno, outro externo; o 2º, 1/4 do comprimento do 1º; o 3º, 2/

3 do comprimento do 1º; garras alongadas, a interna 1,5 vezes o comprimento da outra e

tão longa quanto seu tarsômero (fig. 54).

Tégminas cobrindo 3/4 do comprimento do abdômen (figs. 59, 60, 81). Asas pos-

teriores mais longas, atingindo a base dos cercos e mais raramente os ápices (fig. 81). FE

com 60 dentes, relativamente espaçados e pouco inclinados (fig. 57).

Margem posterior do último urosternito do macho reta e contínua. Cercos com 3/4

do comprimento do pronoto (fig. 81).

Dimensões: CC 34,44; COC 0,52; LOC 0,3; DIOC 1,0; DOOC 0,27; DIO 2,0; CP

10,3; LP 7,9; CAA 14,7; LAA 6,1; CAP 21,3; CDS 3,5; LDS 0,87; CDI 2,65; LDI 0,75;

CDT1 2,62; LDT1 0,85; CDT2 1,72; LDT2 0,42: CITA 4,9: LITA 1.2: CEP

0,87; CFP 10,6; CFE2,45: CAE 4,3: ECE 82.

Diagnose. S. riograndensis é semelhante a S. borellii da qual distingue-se por apre-

sentar ocelos maiores e mais aproximados, distância ocular-ocelar menor, fila estridulatória

com menor número de dentes mais espaçados e menos inclinados, coloração geral do

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 83

corpo mais clara e ausência do padrão de manchas na face dorsal dos fêmures posterio-

res. Biologicamente distingue-se por apresentar sons mais graves, com frequências por-

tadora e moduladora menores. O habitat restrito à zona litorânea e o hábito necrófago

também diferenciam a espécie.

Informações biológicas e ecológicas. Foram obtidos exemplares procedentes de

praias arenosas, onde facilmente o animal dissimula-se devido a sua coloração testácea

muito clara. As ninfas são encontradas durante todo ano e os adultos aparecem nos meses

mais quentes, desde setembro até março. Vivem preferencialmente no supra litoral, na

zona que vai desde a linha das últimas ondas até o início das dunas, debaixo de qualquer

substrato onde possa haver retenção de umidade. Nas praias, tanto ninfas quanto adultos,

podem ser encontrados em locais totalmente abertos e sem vegetação. Foram encontra-

dos também sob cadáveres de aves marinhas e de tartarugas na praia. N. Gianuca (com.

pessoal) observou-os, ainda, sob cadáveres de peixes e de baleias. É omnívora. Em labo-

ratório aceitou bem alimentação à base de proteína de soja texturizada; as ninfas são

bastante resistentes à ausência de alimentação e sensíveis à falta de umidade, que deve

ser mantida acima de 70%. O mesmo foi observado na natureza, onde, galerias mais

profundas são encontradas em partes mais secas da areia. Observou-se, ainda, que a

necrofagia pode ocorrer.

Informações sonográficas. Foram registrados e analisados sons de chamada e

cortejamento de 6 machos em diferentes momentos. Os sons de chamada apresentaram

14 pulsos/trinado, em média, com modas em 13 e 15 pulsos. A fregüencia média de

modulação de amplitude foi de 42,10 Hz, com modas em 36 e 38 Hz. A frequência

portadora média foi de 2,19 kHz, com modas em 2,1 e 2,2 kHz. A amplitude média

desses sons foi de 5,10 mV, com moda em 2,2 mV (figs. 94-97). Os sons de cortejamento

apresentaram em média 8,5 pulsos/trinado, com moda em 9 pulsos. A frequência média

de modulação de amplitude desses sons foi de 51,46 Hz, com modas em 48 e 50 Hz e a

frequência portadora média e modal foi de 2,3 kHz. A amplitude média para os sons de

cortejamento esteve em 4,82 mV, com moda em 5,8 mV. Sons de cortejamento são emi-

tidos continuamente, apresentando, em média, 2,7 trinados/s, estando o valor modal em

3,0 trınados/s (figs. 98, 99).

Discussão. A fregiiência portadora média obtida para sons de chamada, 2,2 kHz,

difere bastante daquela típica de S. borellii, em média 2,6 kHz, com a maioria dos casos

em torno de 2,7 kHz, no máximo 2,8 kHz e no mínimo 2,4 kHz, conforme observado por

ULAGARAJ (1976) e confirmado em laboratório. Por outro lado as frequências de mo-

dulação de amplitude para os sons de chamada e cortejamento de S. borellii apresentaram

valores médios de 53,3 Hz e 79,93 Hz, respectivamente, enquanto que para a nova espé-

cie esses valores são menores, 42,10 Hz e 51,46 Hz, respectivamente (figs. 94-99).

De acordo com NICKLE & CASTNER (1984) espécies crípticas são comuns entre

os grilotalpídeos, havendo espécies morfologicamente idênticas que podem, porém, ser

diferenciadas por aspectos sonográficos e comportamentais. Assim, no mesmo ano, des-

creveram S. imitatus, muito semelhante a S. vicinus, e BENNET-CLARK (1970b) dife-

renciou a espécie Gryllotalpa vinea de G. gryllotalpa, embasados principalmente nes-

ses aspectos.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

84 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

Os sons de chamada são mais graves que os produzidos por S. borellii e S. vicinus.

FORREST (1983) observou que a dispersão dos sons de chamada, de baixas fregiiências,

das formas braquípteras de Neocurtilla hexadactyla em Porto Rico, se realiza através do

solo e não do ar pois, os machos não constroem câmaras de ressonância para emissão de

seus sons, sendo o solo o meio de propagação.

Material-tipo. BRASIL. Rio Grande do Sul: Salinas. Holótipo &, 25.X.1992, V.L.C.-Lascombe col.

(MCPU, 1884). Parátipos: 15 6,269: 5 5,99, mesmos dados do holótipo (MCPU 1880-1883, 1885-1894: 19,

1? MZSP, ex-MCPU 1885,1892; 1 9 MNRJ, ex-MCPU 1894); Torres, 1 9, 14.X.1958,E. Corseuil col. (FAVU,

02861); 2 5, 09.XII.1964, Pe. Buck col. (MAPA 7425, 7428); Costa do Sol, 1 GS, 10.11.1992, PM. Rodel col.

(MCPU, 1875); Imbé, 1 6S, 14.VII.1965, J.W. Thomé col. (MCNZ, 34703); Tramandaí, 1 3, 19, em álcool,

28.X. 1990, E. Corseuil col. (MCPU, 0310, 0309); 36, 39, LI, NI, IX,XII.1992, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU,

1869, 1873, 1875, 1877, 1878, 1897); Pinhal, 29, 08.X11.1992, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU, 1895, 1896);

19, 11.X.1992, L. Jantsch col. (MCPU, 1879); Rio Grande, 1 GS, 49 23.IX.1992, N.M. Gianuca col. (MCPU,

1908-1912: 1 @ MNRJ, ex-MCPU); 1 2, 04.X.1992, N.M. Gianuca col. (MCPU 1916); 3 92, 14.X.1992,

N.M.Gianuca col. (MCPU, 1913-1915); 16 ‚27.1.1993, N. M. Gianuca col. (MCPU, 1918).

Distribuição. Zona litorânea do Rio Grande do Sul, Brasil.

Scapteriscus tetradactylus (Perty, 1832)

(Figs. 62-71)

Gryllotalpa tetradactyla PERTY, 1832 :118, pr. 23, fig. 8, holótipoo, Minas Gerais, Brasil (no NMBS, HORN

& KAHLE, 1936).

Scapteriscus tetradactylus; HEBARD, 1928 :121; 1931 :284; CHOPARD, 1954 :13; 1968 :458.

Scapteriscus camerani GIGLIO-TOS, 1894 :45, figs. 13, 16, sintipos, 1 ge 1 q, San Pedro, Assuncion,

Paraguai, Alfredo Borelli col. (no MIZT, HORN & KAHLE, 1935); 1900 : 8; KIRBY, 1906 :2; REHN,

1907 :395; 1915 :289; 1917 :123; BRUNER, 1916 :352 (chave); HEBARD, 1928 :121, 123 (sin.);

CHOPARD, 1956 :243; 1968 :458; FOWLER, 1987a :284.

Redescrição. Coloração: Dorsalmente fulvo-testácea, inferiormente mais pálida.

Vértice escurecido e ornado com três listras escuras paralelas. Cabeça, pronoto e metade

dorsal da face externa do fêmur posterior manchados de fosco (figs. 62, 63, 64). Pronoto

com manchas escuras em torno da linha mediana (figs. 62, 63).

Corpo grande e robusto; CC 32,05 (1,47) para ambos os sexos.

Ocelos grandes, elípticos, distantes do olho adjacente por mais que sua largura e do

outro ocelo por 2 a 2,5 vezes seu comprimento (figs. 65, 66). COC 0,70 (0,05); DIOC

1,20 (0,17); DIO 2,53 (0,22); DOOC 0,39 (0,11), para ambos os sexos (figs. 65, 66).

Pronoto subquadrado, robusto, tegumento áspero; CP 9,74 (0,73); LP 8,75 (0,15),

para ambos os sexos (figs. 62, 63).

Däctilos tibiais fortes, robustos, ápices obtusos, separados na base por um espaço

maior que metade da largura do dáctilo inferior; CDS 3,32 (0,28); LDS 1,07 (0,08); CDI

2,80 (0,20); LDI 0,87 (0,13); DID 0,50 (0,05). Dáctilos tarsais igualmente fortes e robus-

tos; CDT1 1,95 (0,20); LDT1 0,95 (0,15); CDT2 1,30 (0,20); LDT2 0,55 (0,05). Trocanter

anterior grande, margem inferior naviculiforme, mostrando-se sempre arredondada até a

extremidade da margem superior (fig. 71); CTrA 5,45 (0,45); LIrA 1,37 (0,12); CLTr

2,56 (0,19). Tímpanos com apenas metade de seu diâmetro visível dorsalmente (fig. 68).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 85

Fêmures posteriores mais longos que o pronoto; CFP 11,13 (0,80). Tíbias posteriores

armadas de 4 espinhos longos e fortes na margem interna; ápice com 3 espinhos internos

e 3 externos de igual tamanho (fig. 64).

Tégminas longas, apenas levemente mais curtas que o abdômen; CAA 18,76 (2,76);

LAA 9,16 (0,78) (figs. 69, 70). FE composta por muitos dentes, 118 (CPSG, 3012) e 92

(CPSG, 3515), muito estreitos e aproximados (fig. 67); CFE 2,73 (0,27); CAE 1,85

(0,10). Asas posteriores mais longas que o abdômen, ultrapassando o ápice dos cercos;

CAP 26,92 (1,60).

Margem posterior do último urosternito dos machos com proeminência central tri-

angular. Cercos longos, aproximadamente 3/4 da longitude do pronoto; CCE 7,05 (0,75).

Diagnose. S. tetradactylus é semelhante a S. didactylus e S. vicinus; da primeira

distingue-se por apresentar lâmina do trocanter maior, tégminas que cobrem quase que

totalmente o abdômen, DOOC maior que a largura do ocelo, DIOC maior, 2 a 2,5 vezes

o COC, e DIO maior que 2,0 mm; da segunda distingue-se pelo COC, DIOC, DOOC e

DIO maiores e pelo pronoto quadrangular. Distingue-se, ainda, de ambas pelo formato

robusto do corpo (CC/LP menor que 4), pelo padrão de manchas do pronoto e fêmures

posteriores, CFE e número maior de dentes na fila, além da DID maior que 0,3 mm.

Informações ecológicas. A ocorrência para o Rio Grande do Sul foi assinalada por

FOWLER (1987a) na região da fronteira com o Uruguai, em Santana do Livramento,

onde observou revoadas nos meses de setembro, outubro e dezembro. A presença de fila

estridulatória com muitos dentes pequenos e bastante aproximados sugere que os machos

produzam sons agudos com fregiiência portadora elevada.

Material examinado. URUGUAI. Maldonado. Santo Antônio, 19, 01.X. 1984, A.S. Guido col., (MCPU

1671, ex-CPSG 3445-2); Cerro del Lago, 1 S, 24.X.1984, A.S. Guido col., (MCPU 1670, ex-CPSG 3515);

San Ramon, 16,22.X.1981,A.S. Guido col. (MCPU 1672, ex-CPSG 3012); 22, 25.X1.1982, A.S. Guido col.,

(MCPU 0306, ex-CPSG 3223-1, 0307, ex-CPSG 3223-2, em álcool).

Distribuição. América do Sul: Suriname, Venezuela, Colômbia, Equador, Peru,

Bolívia, Brasil (AM, PA, MS, RS), Paraguai, Argentina, Uruguai.

Scapteriscus vicinus Scudder, 1869

(Figs. 72-79, 86, 87)

Scapteriscus vicinus SCUDDER, 1869 :12, pr. 1, figs. 4,23, 6síntipos,30,39:1, de Rio Negro, S.A.,

recebido de PR. Ulher, na SHS; 19, do Piauí, Brasil, O.H. St. John col., em álcool, no MCZC; 1S, do

Panamá, J. Akhurst col.,na SHS; 1 2, do Pará, Brasil, da “Thayer Expedition”, no MCZC; 1 9, de Rio

Grande, Capt. Harrington col., no MCZC; 1 G, da Ásia (indicação provavelmente errônea para localida-

de), da coleção Schaum, na SHS; KIRBY, 1906 :2; BRUNER, 1916 :352 (chave), 354; REHN & HEBARD,

1916:278; REHN, 1917 :123; HEBARD, 1928 :122; 1931 :285; HAYSLIP, 1943 :33; CHOPARD, 1954

:14; 1968 :458; ULAGARAJ, 1976 :299: BASTOS, 1977 :44; NICKLE & CASTNER, 1984 :457, 459,

fig. 5; FOWLER & COSTA, 1986 :274; FOWLER et al., 1985 :1086; 1986: 167; FOWLER, 1987a :286;

1987b :297; 1988 :6.

Scapteriscus agassizii SCUDDER, 1869 :13, 4 síntipos, 3 S, 19, de Neuchatel, Suíça (provavelmente

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

86 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

introduzidos da América Central), Agassiz col., no MCZC; KIRBY, 1906 :2; BRUNER, 1916 :352

(chave); REHN & HEBARD, 1916 :278 (sin.); REHN, 1917 :123.

Redescrição. Coloração em geral fulvo-testácea dorsalmente e mais escura ventral-

mente. Cabeça, pronoto e fêmur posterior testáceos, com manchas escuras (figs. 72, 74);

no pronoto com manchas escuras em torno da linha mediana (fig. 72). Tégminas testáceas,

nervuras escuras ou fulvo escuras.

Corpo alongado; CC 29,14 (2,72) / 29,48 (2,50).

Ocelos ovais ou ligeiramente circulares, levemente convexos, cada um distante do

olho adjacente por aproximadamente sua própria largura e do outro ocelo por 2 a 2,5

vezes seu comprimento (fig. 75). COC 0,47 (0,06) / 0,47 (0,05); DIOC 1,08 (0,08) / 1,04

(0,06); DIO 2,14 (0,10) / 2,10 (0,09); DOOC 0,34 (0,04) para ambos os sexos. Olhos

menores e menos distantes que em S. didactylus.

Pronoto arredondado; CP 7,58 (0,40) / 7,85 (0,48); LP 6,87 (0,42) / 7,16 (0,48)

(fig. 72).

Trocanter anterior longo, curvado levemente para cima, um pouco espatulado,

margem superior ligeiramente convexa, a metade basal da margem inferior levemente

côncava e a externa convexa e glabra, a extremidade claramente arredondada; CTrA 4,27

(0,38) / 4,62 (0,36); LIrA 1,05 (0,07) / 1,13 (0,14). Lâmina cortante do trocanter arre-

dondada no ápice; CLTr 1,88 (0,15) / 1,97 (0,15) (fig. 79). Dáctilos tibiais paralelos,

aproximados, separados na base por um espaço raramente perceptível, curvados forte-

mente para cima, o superior deles ligeiramente para baixo, longo, forte, o inferior expan-

dido consideravelmente logo além da base; CDS 2,65 (0,29) / 2,59 (0,22); LDS 0,92

(0,06) / 0,92 (0,11); CDI 2,31(0,21):/ 2:23 (0,15); LDLE.00.0, 3) 7E 0.09) 2B1B

0,09 (0,03) para ambos os sexos. Däctilos laterais do tarso longos, pontiagudos, cortan-

tes, o 2º menor que metade do tamanho do 1º; CDT1 1,51 (0,23) / 1,47 (0,19); LDTI 0,82

(0,08) / 0,86 (0,11); CDT2 0,90 (0,16) / 0,96 (0,09); LDT2 0,47 (0,05) / 0,50 (0,09).

Garras aciculares delgadas, metade da largura do 1º dáctilo tarsal (fig. 79). Timpanos

com somente metade de seu diâmetro exposto (fig. 73). Fêmures posteriores mais longos

que o pronoto; CFP 9,51 (0,43) / 9,47 (0,56). Borda interna da tíbia posterior com 4

longos espinhos fortes; ápice com 1 espinho curto e 2 longos na margem interna e 3

curtos na margem externa. Artículo tarsal terminal forte, achatado. Garras do tarso poste-

rior subigual ao último artículo tarsal em comprimento, a interna ligeiramente mais

longa (fig. 74).

Tégminas alongadas, aproximadamente 3/4 do comprimento do abdômen, ultra-

passando um pouco a extremidade dos fêmures posteriores; CAA 15,43 (0,88) / 15,22

(1,09); LAA 6,88 (0,48) / 7,18 (0,50) (figs. 77, 78). FE com muitos dentes, bastante

inclinados e muito aproximados (fig. 76), em média, 76,63 (6,66) dentes; CFE 2,09 (0,21);

CAE 4,13 (0,30) (fig. 77). Asas posteriores atingindo além das extremidades dos cercos;

CAP 22,19 (1,21) / 21,65 (1,14).

Margem posterior do último urosternito dos machos com uma proeminência cen-

tral triangular. Cercos com aproximadamente 2/3 do comprimento do pronoto; CCE

5,48 (0,74) / 5,97 (0,59).

Diagnose. S. vicinus é semelhante a S. imitatus pelo formato e padrão de manchas

do pronoto e a S. didactylus pelo DIOC maior que 1,0 mm e DIO maior que 2,0 mm;

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 87

distingue-se de ambas pelos ocelos aproximadamente circulares e menores com COC

menor que 0,5 mm, DID menor que 0,3 (0,05-0,15 mm), comprimento maior da lâmina

do trocanter e pelo número maior de dentes da fila estridulatória, estes mais aproxima-

dos. Distingue-se, ainda da primeira pela DIOC maior que 1,0 mm, DOOC maior e apro-

ximadamente igual a LOC, DIO maior que 2,0 mm e pelo aspecto forte e achatado do

último tarsômero posterior; biologicamente, pelo comportamento menos agressivo e pela

frequência portadora menor dos sons de chamada e cortejamento. Da segunda distingue-

se pelos olhos menores, DIOC cerca de 2,5 vezes a LOC, DIO ligeiramente menor e

comprimento menor da fila estridulatória.

Informações biológicas. Foram obtidas 3 posturas, nos meses de dezembro e janei-

ro, com 2, 8 e 10 ovos brancos, elípticos, com diâmetros médios de 3,2 e 1,6 mm; no

embrionamento a coloração modifica-se para amarelo e posteriormente marrom. Segun-

do HAY SLIP (1943) a fêmea pode colocar de um a 38 ovos, em média 20, em cada célula

ou câmara de incubação e, como as fêmeas de +S. borellii, não cuida de seus ovos e

filhotes. Nas criações, adultos e ninfas mostraram-se bem adaptados às condições

laboratoriais, podendo a umidade ser mantida em torno de 50% e o alimento ser forneci-

do apenas a cada 5 dias. Aceitaram bem alimentação à base de alface mas, na ausência de

vegetal, não aceitaram proteína de soja texturizada. O canibalismo foi também observa-

do. FOWLER et al. (1985) verificaram que é exclusivamente herbívora.

Informações ecológicas. Espécie comum no Rio Grande do Sul, principalmente

em zonas de horticultura e em gramados de campos de golfe. As ninfas ocorrem o ano

todo e segundo FOWLER (1987a) a espécie apresenta apenas um pico reprodutivo du-

rante o ano, no início do verão, conforme observou em Santana do Livramento, RS.

Entretanto, no final do outono, início de junho, foram coletados vários adultos em campo

de golfe em Porto Alegre e observou-se machos emitindo sons de chamada. Os adultos

foram facilmente capturados, atraídos por fontes de iluminação pública, ou pelo exame

de suas tocas nos gramados, das quais foram removidos utilizando-se solução detergente

a 10%. FOWLER (1987b) observou que na natureza os machos têm hábito gregário na

época do acasalamento, necessitando de um espaço mínimo de 250 cm? para emissão de

seus sons.

Informações sonográficas. Foram registrados e analisados sons de chamada produ-

zidos por dois 2 machos, em 22 momentos. As análises revelaram sons de chamada com

19 pulsos/trinado, frequência portadora média de 3,1 (0,1) kHz, frequência média de

modulação de amplitude de 131 Hz e a amplitude média de 60,83 mV (figs. 86, 87). Os

dados sonográficos obtidos em laboratório estão muito próximos daqueles verificados

por ULAGARAJ (1976) em que a fregiiência portadora média foi de 3,2 kHz, em 60

casos gravados na natureza, a temperaturas entre 18 e 32°C, com mínimo de 3,0 e máxi-

mo de 3,4 kHz, sendo a fregiência média de modulação de amplitude de 136 pulsos/s. O

autor observou, ainda, que as fêmeas desta espécie também produzem sons de chamada,

acasalamento e agressividade, porém com frequências portadoras que variam de 2 a 6

kHz e frequência de modulação de amplitude entre 54 e 57 Hz.

Material examinado. BRASIL. Rio de Janeiro: Rio de Janeiro, 19, 23.11.1990, C.M. Mirage col.(MCPU);

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

98 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

Santa Catarina: Concórdia, 1 2, X11.1967, C.Osvino col.(FAVU); Tubarão, 1 9, 18.X1.1990, E. Corseuil

col.(MCPU): Garopaba, 1, 27.X.1990,A. Lise col.(MCPU); Itapiranga, 19, IX.1953, Pe. Buck col.(MAPA);

12,X.1954, Pe. Buck col.(MAPA); Porto Belo,1 9, 25.X.1985, E. Corseuil col.(MCPU). Rio Grande do Sul:

Canela, 1 ? , 18.X1.1990,M. Hoffmann col. (MCPU); Gramado, 1 92, 07.IX.1954, J. Carniel col. (MCPU);

General Osório, 15, 27.X1.1984, A. Trierweler col. (FAVU); Parecy Novo (atual Montenegro), 1 GS, X.1938,

Pe. Buck col. (MAPA); Venâncio Aires, 16,19, 18.X1.1990, E.L. Schmidt col. (DFCS); Santa Maria, 1 9,

14.1V.1978, G.M. Simon col. (DFCS); 1 35, 24.X.1990, V. Marodim col. (DFCS); São Jerônimo (Fazenda

Capão), 19, 17.X.1982, M.E.L. Souza col. (MCNZ); Xangrilá, 19, 24.02.1990,A. Lise col. (MCPU); Imbé,

192, 18.1.1991, M.G. Lascombe col. (MCPU); Tramandaí, 1 9, 15.1X.1990, E. Corseuil col. (MCPU); 1 9,

16.1.1991, E. Corseuil col. (MCPU); Osório, 1 9, 08.1.1963, O. Baucke col. (IPAG); São Leopoldo, 1 9,

19.X.1989, G. Fiorentin col. (MCPU); Sapucaia do Sul, 1 S,1 9, 30.1X.1990, G. Fiorentin col. (MCPU);

Canoas, 12, X1.1990, L. Deren col. (MCPU); 19, 27.X1.1955, U.V. Poletto col. (IPAG); (Mato Grande), 125

‚602, 10.X1-01.X11. 1990, V.L.C-Lascombe col.(MCPU); Porto Alegre, 19,26.X1.1936, Pe. Buck col. (MAPA);

19, X.1962, Pe. Buck col. (MAPA); 19, 10.X1.1966, O.M. Fonseca col. (IPAG); 16, 12.X.1951,.C. Redaelli

col. (IPAG); 2 6,29, 15.V1.1991, V.L.C.-Lascombe col. (MCPU); 1 9, 24/28.X.1980, M.E.L. de Souza col.

(MCNZ); 19, 31.V11.1989, J.A. Bueno col. (MCPU); 1 S, 14.V.1990, V.L.C.-Lascombe col.(MCPU); 1 GS,

18.X1.1990, R.C. Almeida col.(MCPU); Viamão, 15, 10.IX.1985, €. Poli col. (FAVU); (Águas Belas),1 9, 19/

20. X11.1979, M.H. Galileo col. (MCNZ); Guaíba, 1 9, 20.X1.1953 U.V. Poletto col. (IPAG); 1 9, 03.X.1985,

Rodrigues col. (FAVU); Cachoeira do Sul, 19, 20.X1.1989, A.M. Ferreira col. (MCPU); São Lourenço do Sul,

19, 12.1.1990, M.G. Lascombe col.(MCPU); Rio Grande (Estação Ecológica do Taim),1 9, 04. XI1.1986, A.

Lise col. (MCNZ); Bagé, 19, 12.11.1991, S.M. Freitas col. (MCPU); Quaraí, 19, 01.X1.1989, s.col. (FZPU);

Uruguaiana, 1 9, 20.X.1989, s. col. (FZPU).

Distribuição. Sul dos EUA, Américas Central e do Sul: Venezuela, Colômbia, Peru,

Bolívia, Brasil (AM, PI, PA,CE, BA, RJ, SP, SC, RS), Paraguai, Uruguai, Argentina até

Buenos Aires.

Agradecimentos. Ao Dr. Harold Gordon Fowler (DEUN), Profa. Erica Buckup (MCNZ) e Dr. Ubirajara

R. Martins (MZSP) pelas discussões e sugestões que em muito enriqueceram o trabalho. Aos engenheiros

eletrônicos Flávio Soibelmann Glock e Marcos Braga Barros (IPCT) pelo auxílio nas análises sonográficas. Ao

Dr. Aquiles Silveira-Guido (FAMU), Dr. Dionísio Link (DFCS), Dr. Fernando Mayer (MAPA), Dr. Fernando

Zanotta Cruz (FAVU), Profa. Hilda Alice Gastal (MCNZ), Dr. José Roberto Salvadori (CNPT), Profa. Luciana

Cachapuz (IPAG) e Prof. Vicente Rodrigues Simas (FZPU), pelo empréstimo ou doação de material.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BASTOS, J. A. M. 1977. Caracterização das espécies de cachorro d'água (Orthoptera: Gryllotalpidae) do

estado do Ceará, Brasil. Fitossanidade, Fortaleza, 2 (2): 48-49.

BENNET-CLARK, H.C. 1970a. The mechanism and efficiency of sound production in mole crickets. J. exp.

Biol., Cambridge, Mass., 52 :619-652.

—. 1970b. A new French mole cricket, differing in song and morphology from Gryllotalpa gryllotalpa L.

(Orthoptera:Gryllotalpidae). Proc. R. ent. Soc. Lond., London, 39 (9-10) :125-132.

__. 1987. The tuned singing burrow of mole crickets. J. exp. Biol., Cambridge, 128 :383-409.

BIEZANKO, C. M.; BERTHOLDI, R. E. & BAUCKE, O. 1949. Relação dos principais insetos prejudiciais

observados nos arredores de Pelotas nas plantas cultivadas e selvagens. Agros, Pelotas, 2 (3) :156-213.

BRUNER,L. 1916. A South American mole crickets, Gryllotalpoidea and Achetoidea. Ann.Carneg.Mus.,

Pittsburg, 10 :345-354.

CASTNER, J. L. & NICKLE, D. A. 1988. Notes on Scapteriscus oxydactylus in Peru. Metaleptea, Detroit,

10 (1):6].

CHOPARD,L. 1954. Orthopteres: Gryllidae et Tridactyllidae. Beitr. Fauna Perus, Berlin, 4 :13-27.

_. 1956. Some crickets from South America (Grylloidea and Tridactyloidea). Proc. U. S. natn. Mus.,

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 89

Washington, D.C., 106 (3366):241-293.

— . 1968. Gryllides. In: Orthopterorum Catalogous. Gravenhage, M. Beier, v. 12, p. 443-459.

FORREST, T.G. 1982. Acoustical communication and bafling behaviors of crickets. Flor. Ent., Gainesville, 65

(1) :33-44.

— . 1983. Phonotaxis and calling in Puerto Rican mole crickets (Orthoptera:Gryllotalpidae). Ann. ent.

Soc.Am., Columbus, 76 (2) :797-799.

FOWLER, H. G. 1987a. Geographic variation in the flight periodicity of New World mole crickets. J.

Interdisc. C. Res., Pittsburg, 18 (4) :283-286.

— . 1987b. Spatial distribution and behavior of calling Scapteriscus vicinus (Orthoptera:Gryllotalpidae in

Brazil. Revta bras. Biol., Rio de Janeiro, 47 :297-299.

— . 1988. Man, insects and littoral ecossystems in Brasil: the role of trade history and chance in shaping

biogeographical distribution. Anual Report Mole Cricket Research, Gainsville, 10 :3-11.

FOWLER, H. G. & COSTA, M. M. L. 1986. Paquinhas do gênero Scapteriscus (Orthoptera, Gryllotalpidae)

como pragas em campos de golfe das Américas. Revta bras. Ent., São Paulo, 30 (2) :271-276.

FOWLER, H. G.; CRESTANA, L. & CAMARGO, M. T. V. de. 1985. Feeding habits of brasilian mole

crickets (Orthoptera: Gryllotalpidae: Scapteriscus and Neocurtilla sp). J. Econ. Ent., Geneva, 78 (5):

1076-1078.

FOWLER, H.G.; CRESTANA, L.; CAMARGO, D. & CAMARGO, M.T.V. de. 1986. As paquinhas

(Orthoptera: Gryllotalpidae: Scapteriscus e Neocurtilla) do Estado de São Paulo. Científica, São Paulo,

4 (1/2) :159-172.

FOWLER, H.G.; CRESTANA, L.; CAMARGO, M. T. V. de et al. 1987 a. Functional response of the most

prevalent potential predators to variation in the density of mole crickets (Orthoptera: Gryllotalpidae:

Scapteriscus borellii). Naturalia, São Paulo, 11/12 :47-52.

FOWLER, H.G.; JUSTI Jr., J. & COSTA, M.M. L. 1987b. Subterranean cage studies on field survivorship of

Scapteriscus borellii (Orthoptera: Gryllotalpidae). Naturalia, São Paulo, 11/12 :43-46.

FOWLER,H. G.; ORTEGA, V. R. & TEIXEIRA, L. L. 1987c. Flight activite of Neocurtilla hexadactyla

(Perty) (Orthoptera: Gryllotalpidae): asynchronous mobile populations? J. N.Y. ent. Soc., New York, 95

(4) :469-473.

FOWLER, H. G. & PINTO, J.C.A. 1989. Life history of the northern mole cricket Neocurtilla hexadactyla

(Perty) (Orthoptera: Gryllotalpidae) in southeastern Brazil. Revta bras. Ent., São Paulo, 33 (1) :143-148.

FOWLER, H. G. & VASCONCELOS, H. L. de. 1989. Preliminary data on life cycles of some mole crickets

(Orthoptera: Gryllotalpidae) of the Amazon Basin. Revta bras. Ent., São Paulo, 33 (1) :139-141.

GIGLIO-TOS, E. 1894. Viaggio dell dott. Alfredo Borelli nella Republica Argentina e nel Paraguay. Boll.

Musei Zool. Anat. comp. R. Univ. Torino, Torino, 9 (184) :42-46.

— . 1895. Ortotteri del Paraguay, racolti dal Dr. J. Bohls. Zool. Jabrh. Abt. Syst. Oekol. Geogr., Tiere, 8 :804-

818.

— . 1897. Viaggio del Dott. A. Borelli nel Chaco Boliviano e nella Republica Argentina. Boll. Mus. Zool.

Anat. comp. R. Univ. Torino, Torino, 12 (302) :43-47.

__.1900. Viaggio del Dr. A. Borelli nel Mato Grosso e nel Paraguay. Boll. Mus. Zool. Anat. comp. R. Univ.

Torino, Torino, 15 (377) :1-8.

GOROKHOV, A.V. 1984. A contribution to the taxonomy of modern Grylloidea (Orthoptera) with a description

of new taxa. Zool. Z., Moscow, 63 (11) :1641-1650.

HAYSLIP, N.C. 1943. Notes on biological studies of mole crickets at Plant City, Florida. Flor. Ent.,

Gainesville, 26 :33-46.

HEBARD,M. 1924. Studies in the Dermaptera and Orthoptera of Ecuador. Proc. Acad. nat. Sci. Philad.,

Philadelphia, 76 : 109-248.

— . 1928. Studies in the Dermaptera and Orthoptera of Columbia. Trans. Am. Ent. Soc., Philadelphia, 54:

119-122.

— . 1931. Die Ausbeute der deutschen Chaco-Expedition 1925-26. Orthoptera. Konowia, Wien, 10 :257-285.

HORN,W. & KAHLE, I. 1935. Uber Entomologische Sammlungen, Entomologen & Entomo-Museologie.

Ent. Beih. Berl. Dahlem, Berlin, 2 :1-60.

— - 1936. Uber entomologische Sammlungen, Entomologen & Entomo-Museologie. Ent. Beih. Berl. Dalem,

Berlim, 3 :161- 296.

KIRBY, W. F. 1906. A Synonymic Catalogue of Orthoptera. London, British Museum, v. 2, part 1, 562 p.

LIMA, A. da C. 1938. Insetos do Brasil. Rio de Janeiro, Esc. Nac. Agron., v. 1, 470 p.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

90 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

MARIS, S. & GLOCK, F. S. 1990. Utilização do Osciloscópio Tektronix 11402 A com o software Asyst.

Porto Alegre, IPCT-PUCRS, 19 p.

NICKERSON, J. C.; SNYDER, D. E.; OLIVER, €. €. 1979. Acoustical burrows constructed by mole crickets.

Ann. ent. Soc. Am., Columbus, 72 (3) :438-440.

NICKLE, D. A. & CASTNER, J. L. 1984. Introduced species of mole crickets in the United States, Puerto

Rico and The Virgin Islands (Orthoptera: Gryllotalpidae). Ann. ent. Soc. Am., Columbus, 77 (4) :450-465.

PERTY, M. 1832. Gryllides. Delectus Animalium Articulatorum. Gryllides. Monachii, Impressis Editoris,

pr. 23, p. 118-119.

RAGGE, D. R. 1955. The wing venation of the Orthoptera Saltatoria. London, British Museum. 159p.

REHN, J. A. G. 1907. Orthoptera of the families Tettigoniidae and Gryllidae from Sapucay, Paraguay.

Proc. Acad. nat. Sci. Philad., Philadelphia, 59 : 370-395.

_. 1913. A contribution of knowledge of Orthoptera from Argentina. Proc. Acad. nat. Sci. Philad.,

Philadelphia, 56 :273-380.

— . 1915. A further contribution to the knowledge of the Orthoptera from Argentina. Proc. Acad. nat. Sci.

Philad., Philadelphia, 67 :270-292.

— . 1917. The Stanford expedition to Brazil, 1911. Orthoptera II. Trans. Am. ent. Soc., Philadelphia, 43:

118-128.

REHN J. A. & HEBARD, M. 1916. Studies in the Dermaptera and Orthoptera of Costal Plain and Piedmont

Region of the southeastern United States. Proc. Acad. nat. Sci. Philad., Philadelphia, 68 :277-284.

SANTOS, J. H. R. dos; BASTOS, J. A. M.; LOPES, L. de O.; et al. 1977. Caracterização das espécies de

cachorro d'água (Orthoptera: Gryllotalpidae) do Estado do Ceará, Brasil. Distribuição dos taxa do muni-

cípio de Fortaleza. Fitossanidade, Fortaleza, 2 (2) :53-55.

SAUSSURE, H. de. 1874. Mission Scientiphique au Mexique et dans | Amerique Centrale. Researches

Zoologiques, 6e. partie. 3e. Livr. :293-516.

SCUDDER, S. H. 1868. Supplement to the list of butterflies of New England. Proc. Bost. nat. Hist., Boston,

11 :375- 387.

__. 1869. Revision of the large, stylated, fossoriel crickets. Mem. Peabody Ac. Sci., Salem, 1 (1) :3-28.

SILVA, A.G.A.; GONÇALVES, CR.; GALVÃO, D.M.; et al. 1968. Quarto Catálogo dos Insetos que vivem

nas Plantas do Brasil. Seus parasitos e predadores. Rio de Janeiro, Min. Agric. Depto. Def. San. Veg.

Lab. Cen. Patol. Veg., v. 1, n. 2. 622 p.

TOWNSEND, B.C. 1983. A revision of the Afrotropical mole crickets (Orthoptera: Gryllotalpidae). Bull. Br.

Mus. nat. Hist., London, 46 (2) :175-203.

ULAGARAJ, S.M. 1976. Sound production in mole crickets (Orthoptera: Gryllotalpidae: Scapteriscus).

Ann. ent. Soc. Am., Columbus, 69 (2) :299-306.

ULAGARAJ,S.M. & WALKER, T. J. 1973. Phonotaxis of crickets in flight: attraction of male and female

crickets to male calling songs. Science, Washington, D. C., 182 (4118) :1278-1279.

— . 1975. Response of flying mole crickets to three parameters of synthetic songs broadcast outdoors. Nature,

London, 253 (5491/4) :530-532.

WATTENWYL, B.v. & REDTENBACHER, J. 1892. On the Orthoptera of the Island of St. Vincent, West

Indies. Proc. zool. Soc. Lond., London, 40 :196-220.

Recebido em 30.05.1994; aceito em 02.06.1995.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 91

552222222339 93959595>» DESSE

Figs. 1-9. Neocurtilla hexadactyla forma com asas posteriores normais, S e 9? (MCPU 249, 245); regiões

oculares: 1, S',2,9:; pronotos: 3, 0,4, 9; 5, fila estridulatória; 6, perna anterior & , em vista lateral interna;

tegminas: 7,S',8,9:)9, perna posterior & , vista externa. 1A, 1º anal; 3A, 3º anal; Cu,, cubital 1; Cu,, cubital

2; DO, distal oblíqua; DTb1, dáctilo tibial 1; DT2, dáctilo tarsal 2; EFA, espora do fêmur anterior; M, média;

R, radial; R,, radial 1; Rs, radial sector; Sc, subcostal; t, timpano; Tb, tíbia; Tr, trocanter. Escalas = 1 mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

92 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

RE 222 222,29 Pan Bonni

222 a,

Figs. 10-18. Neocurtilla hexadactyla forma braquiptera, Je% (MCPU 237, 240); pronotos: 10,0, 11,9; 12,

tegmina®; 13, perna posterior d', vista externa; 14, fila estridulatöria; regiões oculares: 15,0, 16,9; 17, perna

anterior S , em vista lateral interna; 18, tégmina S . Escalas = 1 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 98

Figs. 19-24. Neocurtilla robusta sp. n. parátipo ? (MCPU 1977); pernas anteriores: 19, lateral externa, 20,

lateral interna; 21, região ocular; 22, perna posterior, vista externa; 23, pronoto; 24, tégmina. Escalas = 1 mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

94 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

222222222)22> 222222 „2?

„m 222222222 III > = 52?

Figs. 25-31. Scapteriscus abbreviatus S (MCPU 1699); 25, pronoto; 26, perna posterior, vista externa; 27,

região ocular; 28, fila estridulatória; 29, tégmina; 30, tímpano; 31, perna anterior em vista lateral interna.

AE, área estridulatória; DI, däctilo tibial inferior; DS, dáctilo tibial superior; DT1, dáctilo tarsal 1; DT3,

dáctilo tarsal 3; Fe, fêmur; LTr, lâmina cortante do trocanter; t, tímpano; Tb, tíbia; Tr trocanter. Escalas = 1

mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 95

[ Ny

Baree TE 7

Se ce |

Figs. 32-39. Scapteriscus borellii (forma 4 pontos), Sd e + (MCPU, 303-1, 331); 32, tégmina & ; 33, perna

posterior & , vista externa; 34, tímpano & ; 35, fila estridulatória; 36, região ocular S ; 37, perna anterior &,

vista lateral interna; 38, pronoto G ; 39, tégmina 9: 1A, 1º anal; 3A, 3º anal; Cu,, cubital 1; Cu,, cubital 2; DO,

distal oblíqua; M, média; MA, média anterior; MP, média posterior; R, radial; Rs, radial sector; Sc, subcostal.

Escalas = 1 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

96 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

LE TIE

Figs. 40-43. Scapteriscus borellii (forma “dark”), 2 (MCPU 3390); 40, pronoto; 41, perna posterior, vista

externa; 42, tégmina; 43, perna anterior, vista lateral interna. Escalas = 1 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... a” 97

3992999999939 99993 999999999992322292

Figs. 44-51. Scapteriscus oxydactylus, & e 2 (MCPU 1673, 1674); 44, timpano G ; 45, pronoto & ; 46, região

ocular S ; 47, perna posterior & , vista externa; 48, fila estridulatória; tégminas: 49,5, 509; 51, perna anterior

O, vista lateral interna. Escalas = 1 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

98 CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

£ EEE. al (jo: 23005 when anne ara in ©

45,

EEE SN

SÁ

LEO

Figs. 52-61. Scapteriscus riograndensis sp. n., parátipos d e9 (MCPU 310, 309); pronotos: 52,0 ,53,9;54,

perna posterior’, vista externa; regiões oculares: 55,5, 56,2; 57, fila estridulatória; 58, tímpanoG; tégminas:

59,5 ,60,9; 61, perna anterior &, vista lateral interna. Escalas = Imm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun. 1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 99

Figs. 62-71. Scapteriscus tetradactylus, S e 9 (MCPU 1672, 1671); pronotos: 62,5 , 63,2 ; 64, perna posterior

O , vista externa; regiões oculares: 65 O, 66,9; 67, fila estridulatöria; 68, timpano & ; tégminas, 695, 70,9;

71, perna anterior G , vista lateral interna. Escalas = 1 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

100

CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

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22923339992920203092793330309333222295230299399552222"

— I

LL" (LS

Figs. 72-79. Scapteriscus vicinus, Se? (MCPU 071, 087); 72, pronotoS ; 73, timpano G ; 74, perna posterior

lateral interna. Escalas = 1 mm.

O , vista externa; 75, região ocular S ; 76, fila estridulatória; tégminas, 77, 78,9; 79, perna anterior G, vista

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun.

1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae... 101

Figs. 80-81. 80, Neocurtilla robusta sp. n., holótipo 9 (MCPU 1976, São Francisco de Paula, RS); 81,

Scapteriscus riograndensis sp.n., holötipo S (MCPU1884, Salinas, RS).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

102

(imV-div)

-5 E

-200 (100 ms/div) 800

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200 (10ms/div ) 300

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(1mVrdiv)

-5

-200 (1ooms/div) 800

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162 (ioms/div) 262

(20 mVrdiv)

-200 (100 ms/div ) 800

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484 (10ms/div ) 584

CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

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2 3 4 kHz

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0,24:

(o) 3

o Mme Hm, nl li ia

Figs. 82-87. Neocurtilla hexadactyla forma braquiptera, som de chamada: 82, oscilogramas; 83, espectro de

frequência portadora; som de cortejamento: 84, oscilogramas; 85, espectro de frequência portadora. Scapteriscus

vicinus, som de chamada: 86, oscilogramas; 87, espectro de frequência portadora.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun.

1996

Caracterização das espécies de Gryllotalpidae.... 103

245,0;

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154,8 (10ms/div) 54,8 o) 2 4 6 8 kHz

Figs. 88-93. Scapteriscus borellii (forma 4 pontos), som de chamada: 88, 90, oscilogramas; 89, 91, espectros

de fregiiências portadoras; som de cortejamento: 92, oscilogramas: 93, espectros de fregiiência portadora.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 65-104, 18 jun. 1996

104

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a -200 (100 ms/div) 800

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CANHEDO-LASCOMBE & CORSEUIL

mV 95

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TE ES à ni ARE E

4 6 kHz

Figs. 94-99. Scapteriscus riograndensis sp. n., som de chamada: 94, 96, oscilogramas; 95, 97, espectros de

freqiiências portadoras; som de cortejamento: 98, oscilogramas; 99, espectro de frequência portadora.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):65-104, 18 jun.

1996

HEMÓCITOS DE LARVAS DE DIATRAEA SACCHARALIS (LEPIDOPTERA,

PYRALIDAE): AVALIAÇÃO DE TÉCNICAS PARA ANALISE EM MICROS-

COPIO DE CONTRASTE DE FASE

Maria Terezinha Siqueira Bombonato!

Elisa Aparecida Gregório?

ABSTRACT

HAEMOCYTES OF LARVAE OF DIATRAEA SACCHARALIS (LEPIDOPTERA, PYRALIDAE):

EVALUATION OF THE TECHNIQUES FOR PHASE CONTRAST MICROSCOPE ANALYSIS. The effect

of different solutions on the preservation and morphological characterization of the haemocytes of Diatraea

saccharalis Fabricius, 1794 (Lepidoptera, Pyralidae) larvae by phase contrast microscopy is reviewed. The

tested solutions were: insect anticoagulant solution (100 mM glucose, 10 mM EDTA, 30 mM trisodium citrate,

26 mM citric acid, 62 mM NaCl, pH 4,0 and osmolarity of 360 mOsKg'"), phosphate buffer saline and insect

saline solution, with or without glutaraldehyde. The dilution of the haemolymph in insect anticoagulant solution,

without gluraldehyde, showed the best result: the haemocytes did not show morphological changes or any sign

of degranulation. Cytoplasmic and nuclear changes have been observed in all haemocyte types of this insect

when other solutions were used.

KEYWORDS. Haemolymph, haemocytes, Diatraea saccharalis, phase contrast microscopy.

INTRODUÇÃO

O estudo das células sangiiíneas dos insetos tem sido realizado em esfregaços de

hemolinfa submetidos a diferentes métodos de coloração e observados ao microscópio

óptico (JONES, 1962; GUPTA, 1969, BREHÉLIN & ZACHARY, 1986, BARDUCO et

al., 1988). Estas preprarações mostram-se inadequadas, uma vez que os hemócitos são

células extremamente frágeis e lábeis. As técnicas empregadas na confecção das lâminas

histológicas levam as c&lulas a perder o conteúdo de seus grânulos e a modificar substan-

cialmente sua morfologia (AZAMBUJA et al., 1991).

Muitas pesquisas com hemócitos de insetos têm sido realizadas, na tentativa de

abordar seus aspectos funcionais, requerendo, assim, a análise dos mesmos em prepara-

ções não submetidas à ação de agentes fixadores. Os trabalhos recentes preconizam a

observação de preprarações de hemolinfa não fixada, em microscopia de contraste de

fase (LELLO et al., 1987; CHIANG et al., 1988; RICHARDS et al., 1989; AZAMBUJA

et al., 1991; KURIHARA et al., 1992; LUCKHARTS et al., 1992 e FENOGLIO et al.,

1. Departamento Ciências Biológicas, Faculdade Ciências, Universidade Estadual Paulista. 17033-360, Bauru, São Paulo, Brasil.

2. Departamento Morfologia, Instituto Biociências, Universidade Estadual Paulista. 18618-000, Botucatu, São Paulo, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 105-110, 18 jun. 1996

106 BOMBONATO & GREGÓRIO

1993).

Diversas soluções estabilizadoras dos hemócitos têm sido utilizadas na coleta da

hemolinfa e confecção das lâminas histológicas, dependendo do animal estudado e prin-

cipalmente da osmolaridade de sua hemolinfa (ARMSTRONG & RICKLES, 1982;

SODERHALL & SMITH, 1983; LEONARDetal., 1985; MEAD et al., 1986; RAHMET-

ALLA & ROWLEY, 1990; AZAMBUJA et al., 1991). Estas soluções são denominadas

anticoagulantes (SAI), pois impedem a formação de trombos ou agregados celulares

(LEONARD et al., 1985), permitindo evidenciar não só suas características morfológicas,

como também analisar as funções dos hemócitos, in vitro.

A larva de Diatraea saccharalis Fabricius, 1794 (Lepidoptera, Pyralidae), também

conhecida por broca da cana-de-açúcar, é uma importante praga da cultura canavieira,

afetando a produção de açúcar e álcool de indústrias. A análise morfológica e quantitativa

de seus hemócitos foi realizada por BARDUCO et al. (1988), em esfregaços de hemolinfa

submetidos a diferentes métodos de coloração. No decorrer do estudo dos hemócitos de

D. saccharalis em preparações não coradas, encontramos dificuldades para manter a

morfologia destas células, para a caracterização de seus diferentes tipos. Apresentamos

os resultados do uso de quatro soluções diluentes na manutenção da morfologia dos

hemócitos de D. saccharalis, para observação em microscopia de contraste de fase.

MATERIAL E MÉTODOS

Larvas de D. saccharalis, em diferentes etapas de desenvolvimento, foram fornecidas pelo Laboratório

de Controle de Pragas da Usina da Barra Açúcar e Álcool S.A., Barra Bonita, São Paulo. A coleta de hemolinfa

foi realizada através de incisão na região ventral, próxima à cabeça. A gota de hemolinfa obtida foi coletada

com auxílio de pipeta Pasteur, colocada sobre lâmina, em gota de diferentes soluções diluentes: 1) solução

salina de inseto (SSI: 154 mM NaCl, 126 mM KCI; 7,20 mM CaCl,; 0,24 mN NaHCO,); 2) solução

anticoagulante de inseto (SAI: 100 mM glicose; 10 mM EDTA; 30 mM citrato de trisódio; 26 mM ácido

cítrico; 62 mM NaCl; pH 4,0 e osmolaridade ajustada para 360 mOsKg'!), segundo LEONARD et al., 1985; 3)

tampão fosfato de Sorensen (TFS: 0,1 M; pH 7,2); 4) as mesmas soluções também foram empregadas com

glutaraldeído, em concentrações de 0,5; 1; 1,5; 2 e 2,5%.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Dentre as soluções diluentes utilizadas para análise morfológica dos hemócitos de

larvas de D. saccharalis, em microscopia de contraste de fase, a SAI sem glutaraldeído

foi a mais eficiente na manutenção da morfologia destas células (figs. 1, 2). A formulação

da SAI utilizada foi a sugerida por LEONARD et al. (1985), pois foi aquela, dentre as

citadas na literatura, que tinha osmolaridade igual a da hemolinfa da D. saccharalis.

Nesta solução, foram evidenciados seis tipos de hemócitos, identificados segundo GUPTA

(1979) como: prohemócitos (PR), plasmatócitos (PL), granulócitos (GR), esferulócitos

(ES), enocitóides (OE) e células vermiformes (VE). Os hemócitos mantiveram-se ínte-

gros, com suas características morfológicas bastante definidas, facilitando a identifica-

ção e caracterização dos diferentes tipos celulares. A SAI, embora mantivesse melhor a

morfologia dos hemócitos, tornou a documentação fotográfica bastante difícil, uma vez

que as células não se aderiam à lâmina, movimentando-se aleatoriamente e dificultando

sua focalização. A utilização da SAI com 0,5% de glutaraldeído facilitou a realização da

documentação fotográfica, uma vez que fixava as células à lâmina de vidro; nestas

condições, entretanto, a visualização das células era bastante dificultada alguns

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 105-110, 18 jun. 1996

Hemócitos de larvas de Diatraea saccharalis

i 107

Figs. 1-4. Hemöcitos de larvas de Diatraea saccharalis. 1, 2, preparações em SAI, com preservação celular; 3,

prepraração em TES + 0,5% de glutaraldeido; 4, preparação em SSI + 0,5% de glutaraldeido, com alteração do

citoplasma de enocitóide e plasmatócito. Setas, protusão citoplasmática; ES, esferulócitos; OE, oenocitóides;

GR, granulócitos; PL, plasmatócitos; VE, células vermiformes; Barras = 50 um.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 105-110, 18 jun. 1996

108 BOMBONATO & GREGÓRIO

Figs. 5-8. Hemöcitos de larvas de Diatraea saccharalis.5, 6, preparação em TFS, modificações no citoplasma

dos hemócitos; com protusões citoplasmáticas (setas); 7, 8, prepraração em SSI: 7, grande protusão citoplamática

em plasmatócito e coágulo (seta) de granulócitos degranulados; 8, granulócitos degranulados e desintegrados.

PL, plasmatócitos; GR, granulócitos; OE, enocitöides; ES, esferulöcitos. Barras = 50 um. |

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 105-110, 18 jun. 1996

Hemócitos de larvas de Diatraea saccharalis... 109

minutos após a coleta, devido à formação de um fundo escuro, decorrente da coagulação

das proteínas do plasma. Maiores concentrações de glutaraldeído agravaram a visualização

e documentação dos hemócitos.

As preparações realizadas com hemolinfa em SSI ou TFS, sem glutaraldeído, não

mantiveram as características morfológicas dos hemócitos de larvas de D. saccharalis,

que se apresentaram bastante alterados poucos minutos após a coleta. A ocorrência de

profusões citoplasmáticas foi a alteração celular mais frequentemente detectada (figs. 5 -

7). Também observou-se o aumento do volume dos ES, decorrente do entumescimento e

liberação de conteúdo granular; os PL aderiam e espalhavam-se sobre a lâmina de vidro,

dificultando sua visualização. Os OE modificaram o contorno e as caracterísiticas

citoplasmáticas, mostrando um citosol floculado (figs. 5, 6). Os GR rapidamente agrupa-

vam-se formando coágulos (fig. 7), ou ainda espalharam-se e degranularam, rapidamente

(fig. 8).

Embora as SSI e TFS acrescidas do 0,5% de glutaraldeído conservassem um pou-

co melhor as características morfológicas dos hemócitos de larvas de D. saccharalis,

muitas das alterações já citadas ainda foram detectadas (figs. 3,4). O aumento da concen-

tração de glutaraldeído (de 1 a 2,5%) propiciou preservação adequada dos hemócitos,

porém fixou também as proteínas plasmáticas, chegando a formar um gel de proteínas

coaguladas, que impediram a visualização adequada das células.

Os hemócitos de larvas de D. saccharalis já haviam sido estudados, em esfregaços

de hemolinfa fixados e corados convencionalmente para análise com microscópio óptico

(BARDUCO et al., 1988). Os resultados obtidos por estes autores divergiram, em parte,

com os observados, com microscópio de contraste de fase. Assim, os PR, PL, GR, ES e

OE foram caracterizados em ambas as preparações. Porém, dois tipos celulares diferi-

ram: os adipohemócitos (AD), descritos por BARDUCO et al. (1988), foram por nós

caracterizados como GR que acumularam gotículas de gordura em seu citoplasma; as

células VE, não descritas por BARDUCO et al. (1988), mostraram-se com característi-

cas morfológicas que as distinguiram das outras células sanguíneas da broca da cana, e

semelhante às células VE encontradas em outros insetos (KURIHARA et al., 1992). Os

resultados obtidos confirmaram observações anteriores de GREGÓRIO & TOLEDO

(1983) que descreveram, com microscópio eletrônico, a presença da célula VE e a simi-

laridade entre GR e AD, em hemolinfa de D. saccharalis.

Agradecimentos. Ao Laboratório de Controle de Pragas da Usina da Barra Açúcar e Álcool S.A.,

Barra Bonita, SP, pelo fornecimento das larvas e do meio de cultura.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ARMSTRONG, P. B. & RICKLES, F. R. 1982. Endotoxin-induced degranulation of the Limulus amoebocytes.

Expl Cell Res., New York, 140: 15-24.

AZAMBUJA, P.; GARCIA, E. S. & RATCLIFE, N. A. 1991. Aspects of classification of Hemiptera hemocytes

from six Triatomine species. Mems Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 86 (1): 1-10.

BARDUCO, M. C.; GREGÓRIO, E. A. & TOLEDO, L. A. 1988. Hemócitos de Diatraea saccharalis

(Lepidoptera: Pyralidae) no período larval. Estudo morfológico e quantitativo. Revta bras. Biol., Rio de

Janeiro, 48: 925-932.

BREHELIN, M. & ZACHARY, D. 1986. Insect haemocytes: A new classification to role out the controversy.

In: BREHELIN, M. ed. Immunity in invertebrates cells, molecules and reactions. Heidelberg, Springer-

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 105-110, 18 jun. 1996

110 BOMBONATO & GREGÖRIO

Verlag. p. 37-48.

CHIANG, A. S.; GUPTA, A. P. & HAN, S. S. 1988. Arthropod immune system: I. Comparative light and

electron microscopic accounts of immunocytes and other hemocytes of Blatella germanica (Dictyoptera:

Blattellidae). J. Morph., Philadelphia, 198: 257-267.

FENOGLIO, C.; BERNARDI, P. & GERVASO, M. V. 1993. Cytochemical characterization of the hemocytes

of Leucophaea maderae (Dictyoptera : Blaberoidea). J. Morph., Philadelphia, 218: 115-126.

GREGÓRIO, E. A. & TOLEDO, L. A. 1983. Aspectos morfológicos ultraestruturais de células sanguíneas de

Diatraea saccharalis (Lepidoptera: Pyralidae) no final do período larval. Ciênc. Cult., (supl.), São Paulo,

332993,

GUPTA,A.P. 1969. The hemocytes of Epicauta cinerea, and a synonymy of hemocytes terminologies.Cytologia,

Tokyo, 34: 300-344.

__. 1979. Hemocyte types; their structures, synonymies, interrelationships and taxonomic significance. In:

GUPTA, A.P. ed. Insects hemocytes: development, forms, functions and techniques. New York,

Cambrigde University. p. 85-127.

JONES, J. C. 1962. Current concepts concerning insect hemocytes. Am. Zool., Lawrence, 2:209-246.

KURIHARA, Y.; SHIMAZUT, T. & WAGO, H. 1992. Classification of hemocytes in the common cutworm,

Spodoptera litura (Lepidoptera : Noctuidae) I. Phase microscopic study. Appl. Ent. Zool., Tokyo, 27: 225-

239.

LELLO, E.; TOLEDO, L. A. & GREGÖRIO, E. A. 1987. Elementos figurados da hemolinfa de Dermatobia

hominis (Diptera : Cuterebridae). Caracterização ao nível de microscopia óptica em larvas do 2º e 3° insta-

res. Mems. Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 82: 351-358.

LEONARD, €. M.; SODERHALL, K. & RATCLIFFE, N. A. 1985. Studies of prophenoloxidase and protease

of Blaberus craniifer haemocytes. Insect Biochem., Oxford, 15:803-810.

LUCKHARTS, S.; CUPP, M. S. & CUPP, E. W. 1992. Morphological and functional classification of the

hemocytes of adult female Simulium vittatum (Diptera: Simuliidae). J. Med. Ent., Lanham, 29: 457-466.

MEAD, G. P; RATCLIFFE, N. A. & RENWRANTZ,L.R. 1986. The separation of insect haemocyte types on

percoll gradients; methodology and problems. J. Insect Physiol., London, 32:167-177.

RAHMET-ALLA, M. & ROWLEY, A. F. 1990. Studies on the cellular defense reactions of the madeira

cockroach, Leucophaea maderae: in vitro phagocytosis of different strains of Bacillus cereus and their

effect on hemocyte viability. J. Invertebr. Pathol., New York, 55: 350-356.

RICHARDS, E. H.; RATCLIFFE, N. A. & RENWRANTZ, L. 1989. The binding of lectins to carbohydrate

moieites on haemocytes of the insects, Blaberus craniifer (Dictyoptera) and Extatosoma tiaratum (Phasmida).

Cell Tissue Res., Berlin, 257: 445-454.

SODERHALL, K. & SMITH, V.J. 1983. Separation of the hemocyte population of Carcinus maenas and other

marine decapods. Dev. Comp. Immunol., Elmsford, 7: 229-239.

Recebido em 13.10.1994; aceito em 02.06.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 105-110, 18 jun. 1996

UNA NUEVA ESPECIE DE OLIGOSARCUS (TELEOSTEI, CHARACIDAE)

DE LA CUENCA DEL RIO PARANA,

MISIONES, ARGENTINA!

Amalia M. Miquelarena?

Lucila C. Protogino”

ABSTRACT

A NEW SPECIES OF OLIGOSARCUS (TELEOSTEI, CHARACIDAE) FROM THE PARANA RIVER

BASIN, MISIONES, ARGENTINA. Oligosarcus menezesi sp. n. from the upper Urugua-í creek, in the system

of the upper Paraná, in Northeastern Argentina is described.

KEYWORDS. Characidae, Oligosarcus, Paraná river, new species, Argentina.

INTRODUCCIÓN

La revisión del género Oligosarcus Giinther, 1864 fue realizada por MENEZES

(1969). Posteriormente, MENEZES & GÉRY (1983) describen cuatro nuevas especies

(O. longirostris, O. paranensis, O. planaltinae y O. schindleri) para diversas localidades

de Brasil y Bolivia. MENEZES (1987) reconoce tres nuevas especies (O. acutirostris, O.

brevioris y O. solitarius) para Brasil, y redefine en base a caracteres taxonómicos y de

distribución las restantes especies del género.

Se describe una nueva especie de Oligosarcus para el Arroyo Urugua-í en el

Noroeste de Misiones, Argentina. Este arroyo es un tributario del río Paraná, y antes de su

desembocadura en el mismo, forma el Salto del Urugua-í de 28 m de altura. El material

estudiado fue colectado en aguas arriba del salto mencionado. Esta área actualmente se

encuentra inundada debido a obras de aprovechamiento hidroeléctrico.

MATERIAL Y MÉTODOS

El material utilizado fue colectado por personal que participó en el “Plan de Relevamiento Florístico

y Faunístico de la Cuenca del Arroyo Urugua-í”, antes del comienzo de las obras de aprovechamiento

hidroeléctrico. Está depositado en el Instituto de Limnologia "Dr. Raúl A. Ringuelet", Argentina (ILPLA) y en

el Museu de Zoologia da Universidade de São Paulo, Brasil (MZSP).

Para las medidas, recuentos y abreviaturas se siguió el criterio de MENEZES (1969, 1987). Las

medidas se realizaron por medio de un calibre Mitutoyo con precisión de 0,1 mm. Todas las medidas están

expresadas en porcentaje de longitud estándar (LS), excepto las referidas a la cabeza, indicadas en porcentaje

de longitud cabeza (LC). Los recuentos se hicieron mediante el empleo de un microscopio estereoscópico. Para

la preparación de material osteológico se utilizaron las técnicas de HOLLISTER (1934) & DINGERKUS &

UHLER (1977).

1. Contribución Científica nº 614 del Instituto de Limnología “Dr. Raúl A. Ringuelet”.

2. Instituto de Limnologia “Dr. Raúl A. Ringuelet”, C.C. 712 (1900) La Plata, Argentina.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 111-116, 18 jun. 1996

112 MIQUELARENA & PROTOGINO

Oligosarcus menezesi sp. n.

(Figs. 1-7)

Etimología. Esta especie ha sido dedicada al Dr. Naércio A. Menezes, del Museu

de Zoologia, Universidade de São Paulo, Brasil.

Material tipo. ARGENTINA. Misiones: Arroyo Urugua-í, arriba del Salto del Urugua-i, en terrenos de

la Cia. “Alto Paraná”, holotipo 9, 88 mm LS, II. 1986, N. Toresani et al. col.(ILPLA 299); paratipos 2 9, 58,

5-86 mm LS (diafanizado) (ILPLA 302) y 29, 94,5-100 mm LS (MZSP 48001); 1%, 122,1 mm LS y 159, 126,3

mm LS (diafanizado), VIII. 1986, N. Toresani et al. col. (ILPLA 301); en terrenos de la Cia. "Intercontinental"

(a 8 Km al Norte de la Ruta provincial 18, cercano al Paraje Dos Hermanas), 3 9, 115,6-131,9 mm LS (MZSP

48000) y 2 9, 112,3-126,3 mm LS (ILPLA 300), XI. 1986, N. Toresani et al. col.; Arroyo Uruzü (afluente del

Arroyo Urugu-i, arriba del Salto del Urugua-í) y Ruta provincial 19, Parque Provincial Islas Malvinas, 2 9,

49,4-122,8 mm LS y 46, 101,5-125,8 mm LS (ILPLA 303) y 19, 121,6 mm y 26, 115,8-122,2 mm LS (MZSP

48002), IX. 1986, N. Toresani et al. col.; Arroyo Urugua-í, arriba del Salto del Urugua-í y Ruta provincial 19,

Parque Provincial Islas Malvinas, 1 9, 138,8 mm LS, IX. 1986, N. Toresani et al. col. (ILPLA 304); 49, 36,5-

101,5 mm LS, II. 1986, N. Toresani et al. col. (ILPLA 305); Arroyo Urugua-í, arriba del Salto del Urugua-í, en

Isla Palacios, 3 2, 70,1-78 mm LS (diafanizado) y 1 S, 83 mm LS, XII. 1983, D. Somay col. (ILPLA 306).

Diagnosis. Se diferencia de las restantes especies del género por la siguiente

combinación de caracteres: ectopterigoides con una serie de 4-10 dientes y escamas

perforadas de la línea lateral 40-48.

Descripción. Cuerpo de tamafio moderado (36,5-138,8 mm LS), comprimido, las

hembras alcanzan mayor longitud que los machos (holotipo 2, fig. 1). Dorso de la cabeza,

desde el extremo del hocico hasta la región occipital, ligeramente recto. Perfil dorsal del

cuerpo hasta el origen de la aleta dorsal recto, posteriormente desciende hasta el origen

de la aleta adiposa, haciéndose cóncavo a nivel del pedúnculo caudal. Perfil ventral del

cuerpo desde el extremo de la mandíbula hasta el origen de las aletas ventrales convexo,

y desde este punto hasta el origen de la aleta anal ligeramente recto. Base de la aleta anal

oblicua. Hocico alargado, su longitud mayor que el diámetro ocular, menor o igual en los

individuos de menor longitud. Quijada inferior incluida. Los dos caninos anteriores del

premaxilar, visibles externamente cuando la boca está cerrada. Premaxilar con el processo

ascendente realtivamente corto y el processo lateral muy ensanchado. Este último con un

canino anterior poco desarrollado, seguido por 3 a 6 dientes cónicos o tricúspides, de los

cuales el del medio es más grande e interno. La serie se continúa con un canino similar al

sinfisial y a veces, con 1 o 2 dientes cónicos o tricúspides (figs. 2, 3). Maxilar corto, no

alcanza el borde posterior del ojo, presenta 17-23 dientes tricüspides o pentacüspides

(figs. 4, 5). Ectopterigoides con una hilera de dientes cónicos o tricúspides, en número

variable 4-10 (fig. 6). Dentario con un canino anterior, seguido por 2 o 3 dientes cónicos

o tricúspides y una serie de 12 a 17 dientes tricúspides menores (fig. 7). Frecuentemente,

todos los dientes cuspidados se caracterizan por presentar la cúspide central desgastada y

las laterales rudimentarias. Branquiespinas de la rama inferior del primer arco branquial

12-14. Huesos suborbitales bien desarrollados, cubriendo enteramente la mejilla. Línea

lateral completa, con 40-48 escamas; serie de escamas de la línea lateral al origen de la

aleta dorsal 8-9 y 6-8 de la línea lateral al origen de la aleta anal. Escamas entre el origen

de la aleta dorsal y el proceso supraoccipital 14-19. Escamas del pedúnculo caudal 16-19.

Aleta dorsal ii, 9. Aleta pectoral i, 12-15. Aleta pélvica 1, 7. Aleta anal iv-v, 21-26. Caracteres

morfométricos y merísticos (tabla 1).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 111-116, 18 jun. 1996

Una nueva especie de Oligosarcus... 113

Tabla I - Datos morfométricos y merísticos de Oligosarcus menezesi sp. n. expresados en porcentaje de longitud

eständar (LS) y porcentaje de longitud cabeza (LC). Abreviaturas: A, anal; C, caudal; D, dorsal; P, pectoral; V,

pélvica; X, media y S, desviación estandard.

Holotipo Paratipos

Q & 2

N Rango X S N Rango x S

LS 88,0 9 83,0-126,3 113,7 Be 19 36,5-138,8 91,8 31,62

altura 30,3 9 29,1-32,4 30,5 1,16 19 27,3-33,2 29,5 1,31

hocico-origen D 51,7 9 48,1-51,0 49,8 0,99 19 50,7-54,0 52,1 0,87

hocico-origen P 26,2 9 20,9-23,6 22,4 0,87 19 22,3-27,9 24,9 1,50

hocico-origen V 43,6 9 39,7-43,0 41,4 1,00 19 40,9-47,5 43,8 1,45

hocico-origen A 59,4 9 53,8-60,3 58,1 1,90 19 57,3-63,4 61,1 1,49

alt. pedünc. caudal 10,8 9 9,8-10,9 10,2 0,37 19 8,6-13,4 10,0 1,03

long. P 21,6 9 19,4-22,0 20,6 0,82 19 18,9-24,9 21,3 155

long. V 17,6 9 16,2-18,2 17,1 0,56 19 15.0-19.8 16,9 1,19

base D 13,5 9 13,2-15,4 13,9 0,70 19 11,4-17,0 13,9 1,16

alt. D 2). 9 20,4-23,0 212 0,79 19 19,3-26,1 22,3 2,00

base A 29,2 9 28,3-33,2 30,0 1,40 19 25,4-30,1 23 1,58

alt. A 18,5 9 14,7-17,2 16,1 0,78 19 16,1-24,4 19,0 2,55

ojo-origen D 40,0 9 37,6-40,8 38,9 1,08 19 38,3-41,3 39,7 0,83

origen D-origen C 47,9 9 47,0-51,7 49,2 1,56 19 43,3-50,3 47,8 1,56

LC 29,2 9 26,4-29,5 28,1 0,91 19 28,2-30,9 29,4 0,70

diäm. orbit. 24,9 9 24,1-27,7 25,7 1,16 19 23,1-32,7 26,4 3,03

long. hocico 26,8 9 24,1-28,8 MN 1,34 19 23,2-30,6 28,0 2,38

dist. interorb. 26,8 9 26,1-30,7 27,9 1,51 19 25,0-28,6 26,6 1,16

long. maxilar 35,8 9 36,2-49,4 41,2 Sil 19 35,6-49,2 40,3 3,28

Radios A 26,0 9 23,0-26,0 24,0 0,88 19 21,0-26,0 24,0 1,61

Radios P 13,0 9 12,0-14,0 13,0 0,71 19 12,0-15,0 13,0 0,85

Branquiespinas 13,0 9 12,0-14,0 13,0 0,73 16 13,0-14,0 14,0 0,48

Escamas línea lateral 47,0 8 40,0-47,0 45,0 Da 18 40,0-48,0 45,0 2,41

Escamas arriba linea lateral 8,0 9 8,0-9,0 8,0 0,50 19 8,0-9,0 8,0 0,42

Escamas debajo línea lateral 7,0 8 7,0-8,0 8,0 0,52 18 6,0-8,0 7,0 0,68

Escamas pedünc. caudal 19,0 9 16,0-19,0 18,0 1,12 12 17,0-19,0 18,0 0,75

Escamas predorsales 17,0 9 14,0-18,0 16,0 1,22 13 15,0-19,0 17,0 1,14

Dientes maxilares 22,0 9 19,0-22,0 20,0 1,01 17 17,0-23,0 19,0 2,03

Dientes posteriores dentario 14,0 9 13,0-17,0 15,0 1,05 16 12,0-15,0 14,0 oito)

Dientes ectopterigoides 8,0 9 4,0-10,0 7,0 2,05 17 4,0-9,0 7,0 1,32

Coloraciön en alcohol. Regiön dorsal del cuerpo pardo oscuro y la regiön ventral

más clara. Dorso de la cabeza pardo oscuro, área de los suborbitales y hueso opercular

con pequefisimos cromatöforos de color marrón. Mancha humeral de color marrón bien

“desarrollada, alargada en sentido vertical. Una banda lateral pardo oscura que comienza

poco definida aproximadamente a tres escamas de la mancha humeral, haciéndose nítida

a nivel de la aleta dorsal, y extendiéndose posteriormente para ensancharse a nivel del

pedúnculo caudal, terminando en los radios caudales medios. Aletas dorsal, anal y caudal

con pequefios cromatóforos de color marrón dispersos en la membrana interradial. Borde

distal de las aletas dorsal, anal y caudal ligeramente oscuro. Aletas pectorales y pélvicas

traslúcidas.

Distribución geográfica. Arroyo Urugua-í arriba del Salto del Urugua-i, cuenca del

rio Paraná, provincia de Misiones, Argentina (fig. 8).

Discusión. Oligosarcus menezesi está incluida entre las especies que poseen 20 o

menos series horizontales de escamas alrededor del pedúnculo caudal al igual que O.

brevioris, O. solitarius, O. pintoi Campos, 1945, O. planaltinae, O. macrolepis

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 111-116, 18 jun. 1996

114 MIQUELARENA & PROTOGINO

METRIC 1 2 3 4 5 6 7 8

Fig. 1.- Oligosarcus menezesi sp. n. Holótipo, vista lateral (ILPLA, 299, 1 x, 88 mm LS), Arroyo Urugua-í

arriba del Salto del Urugua-í, Misiones, Argentina.

(Steindachner, 1876) y O. argenteus (Günther, 1864), diferenciändose de todas las especies

que poseen más de 20 series horizontales de escamas. Difiere de O. brevioris por presentar

menor número de escamas en la línea lateral (40-48 vs. 47-56); en la serie predorsal (14-

19 vs. 18-23) y de dientes en el ectopterigoides (4-10 vs. 7-18). De O. solitarius por

poseer menor número de escamas en la línea lateral (40-48 vs. 48-55); en la serie predorsal

(14-19 vs. 19-23); menor número de dientes en el maxilar (17-23 vs. 24-35) y en el

ectopterigoides (4-10 vs. 10-21). Se distingue de O. pintoi por presentar mayor número

de escamas en la línea lateral (40-48 vs. 36-40) y mayor número de escamas en el pedúnculo

caudal (16-19 vs. 13-16). De O. planaltinae por presentar mayor número de escamas en

la línea lateral (40-48 vs. 38-40); mayor número de escamas predorsales (14-19 vs. 15) y

menor número de dientes en el maxilar (17-23 vs. 24-27) y en el ectopterigoides (4-10 vs.

10-18).

Con respecto a las características merísticas y morfométricas es muy semejante a

O. macrolepis y O. argenteus, pero difiere de ambas, por presentar menor número de

dientes en el ectopterigoides (4-10 vs. 11-14 y 8-15) respectivamente. Por otra parte, O.

longirostris y O. paranensis, especies de distribución afín, se diferencian claramente de

Oligosarcus menezesi por pertenecer aquellas al grupo de especies que poseen más de 20

escamas alrededor del pedúnculo caudal. Además, O. longirostris presenta mayor número

de escamas en la línea lateral (47-51 vs. 40-48); en la serie predorsal (20-24 vs. 14-19);

de dientes en el maxilar (24-32 vs. 17-23) y en el ectopterigoides (10-14 vs. 4-10). O.

paranensis presenta mayor número de escamas en la línea lateral (47-54 vs. 40-48); de

escamas predorsales (19-24 vs. 14-19) y de dientes en el ectopterigoides (7-22 vs. 4-10).

MENEZES (1988), en su trabajo sobre los patrones de distribución de las especies

del género Oligosarcus, destaca la importancia que han jugado los saltos de agua en el

aislamiento de las especies, permitiendo que dentro de una misma cuenca existan áreas

de endemismo. Una evidencia de ello sería el Salto del Urugua-i antes de la desembocadura

del arroyo en el río Paraná, determinando condiciones especiales que favorecieron el

desarrollo de especies endémicas. No obstante, la presencia de especies compartidas con

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 111-116, 18 jun. 1996

Una nueva especie de Oligosarcus... 115

mes

Fig. 2-7. Oligosarcus menezesi sp. n., Premaxilar izquierdo: 2, vista interna; 3, vista externa; 4, maxilar izquierdo,

vista externa; 5, dientes maxilares; 6, dientes del ectopterigoides, vista externa; 7, dentario, vista externa.

Abreviaturas: ang, angular; art, articular; d, dentario; etc, ectopterigoides; mes, mesopterigoides y pal, palatino.

Escala: 5 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 111-116, 18 jun. 1996

116 MIQUELARENA & PROTOGINO

54°30'

10 km

Fig. 8 - Cuenca del Arroyo Urugua-i, Misiones, Argentina: 1, Arroyo Urugua-i en Isla Palacios; 2, Arroyo

Urugua-i y Ruta provincial 19, Parque Provincial Islas Malvinas; 3, Arroyo Uruzú (aflante del Arroyo Urugua-

1) y Ruta provincial 19, Parque Provincial Islas Malvinas; 4, Arroyo Urugua-í en terrenos de la Cia. "Alto

Paraná"; 5, Arroyo Urugua-í en terrenos de la Cia. "Intercontinental". El asterisco indica las Cataratas del

Iguazú y la estrella el Salto del Urugua-í.

otros sectores de la cuenca, e incluso de áreas no adyacentes (MIQUELARENA et al.,

1994), refleja un grado de aislamiento presente e históricamente relativo, como lo indica

la presencia de otros Characiformes.

Agradecimientos: A Naércio Menezes (MZSP), por sus valiosas observaciones y comentarios sobre la

nueva especie. A Hugo López (MLP e ILPLA) y Adriana Aquino (ILPLA) por la lectura crítica del manuscrito.

A Sergio Gómez que participó en el "Plan de Relevamiento Florístico y Faunístico de la Cuenza del Arroyo

Uruguaí" y donó el material utilizado en este trabajo.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

DINGERKUS, G. & UHLER, L.D. 1977. Enzyme clearing of alcian blue stained whole small vertebrates for

demonstration of cartilage. Stain Technol, New York, 52: 229-232.

HOLLISTER, G. 1934. Clearing and dyeing fish for bone study. Zoologica, New York, 13: 81-101.

MENEZES, N. A. 1969. Systematic and evolution of the tribe Acestrorhynchini (Pisces, Characidae). Arq.

Zool. Est. São Paulo., S. Paulo, 18 (1-2): 1-150.

— 1987. Três espécies novas de Oligosarcus Günther, 1864 e redefinição taxonômica das demais espécies do

gênero (Osteichthyes, Teleostei, Characidae). Bolm Zool., São Paulo, 11: 1-39.

— . 1988. Implications of the distribution patterns of the species of Oligosarcus (Teleostei, Characidae) from

Central and Southern South America. In: HEYER, N.R. & VANZOLINI, P. E. eds. Proceeding of a Work-

shop on Neotropical Distribution Patterns.Rio de Janeiro. Acad. Bras. Ciênc. p. 295-303.

MENEZES, N. A. & GÉRY, J. 1983. Seven new Acestrorhynchin characid species (Osteichthyes,

Ostariophysi,Characiformes) with comments on the systematics of the group. Revue suisse Zool. Bäle, 90

(3): 563-592.

MIQUELARENA, A.M.; LÓPEZ, H. L. & AQUINO, A. E. 1994. Los Ancistrinae (Pisces: Loricariidae) de

Argentina. In: DE CASTELLANOS, Z. A. ed. Fauna de Agua Dulce de la República Argentina. Buenos

Aires, v. 40, cap. 5, p. 1-49.

Recebido em 16.01.1995; aceito em 02.06.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 111-116, 18 jun. 1996

A NEW FERNANDEZINA FROM BRAZIL (ARANEAE, PALPIMANIDAE)

Martín J. Ramírez!

Cristian J. Grismado?

ABSTRACT

The male of Fernandezina tijuca, new species, is described from Rio de Janeiro, Brazil. Based on

morphology of embolus, sister relationship is suggested with F. acuta Platnick, 1975.

KEYWORDS. Fernandezina, Palpimanidae, new species, Taxonomy, Brazil.

INTRODUCTION

The genus Fernandezina Birabén, 1951, comprises four species, three of them from

the brazilian states of Pernambuco and Minas Gerais, and one from northem Argentina

(PLATNICK, 1975; 1977). An additional species, F. gyrongensis Hu & Li, 1987, was

described from China, but it was considered misplaced by PLATNICK (1993).

Fernandezina is recognized by the dorsally unexpanded femur I, the tarsus I nearly as

long as tibia I, and the enlarged abdominal scutum of males, covering at least half of

dorsum (PLATNICK, 1975; 1977). A fourth brazilian species is here described from

Tijuca National Park, Rio de Janeiro.

The embolus of this new species 1s peculiar by its rather straight, long and acute

shape. Only Fernadezina acuta Platnick, 1975, has a similar embolus, among all

Fernandezina and Anisaedus Simon, 1893 species. As Anisaedus is supposed to be the

sister group os Fernandezina (PLATNICK, 1975), and straight and long embolus is present

only 1n the walckenaeri group of Otiothops (a derivative group no closely related with

both genera), the feature appears to be a synapomorphy linking Fernandezina acuta and

F. tijuca sp. n. as sister species.

MATERIAL AND METHODS

Specimens are deposited in Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo (MZSP, J. L. Leme) and

Museo Argentino de Ciencias Naturales (MACN, C.L. Scioscia). The format of description follows PLATNICK

(1975). All measurements are in millimeters.

1.Departamento de Biologia, Laboratorio de Artrópodos, Faculdad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Buenos Aires. Pabellön II

Ciudad Universitaria, 1428, Buenos Aires, Argentina. (Becario UBA in the MACN)

2. Museo Argentino de Ciencias Naturales, Av. Angel Gallardo 470 (1405) Buenos Aires, Argentina.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):117-119, 18 jun. 1996

118 RAMÍREZ & GRISMADO

Fernandezina tijuca sp. n.

(Figs. 1,2)

Type. Male holotype, Brazil, Rio de Janeiro State: Rio de Janeiro, Parque Nacional

da Tijuca, 16.V1.1994, M. Ramírez & R. Baptista col. (MZSP).

Etimology. The specific name is a noun in apposition taken from the type locality.

Diagnosis. Fernandezina tijuca resembles F. acuta but may be distinguished by

the long almost straight embolus and the long cymbial tip (figs. 1, 2).

Male. Total length 2.4. Carapace 1.2 long, 0.88 wide. First leg: femur 1.08 long,

0.26 high; patella 0.77 long; tibia 0.67 long; metatarsus 0.37 long; tarsus 0.52 long. Pos-

terior median eyes separated by one and one-half times their diameter. All sclerotized

integuments reddish-brown. Abdominal scutum covering two thirds of dorsum. One brown

area at each side of abdomen, leaving a narrow cream strip on unsclerotized dorsum.

Unsclerotized venter cream. Male palpal tibia globose, same size as tegulum (figs. 1, 2).

Cymbium with apex almost as long as tegulum. Embolus originating retrolaterally, long,

straight and flattened, partially translucent.

Natural history. Specimens were collected on leaf litter in forest. One immature

Figs. 1,2. Fernandezina tijuca sp. n., right palp: 1, prolateral view; 2, ventral view. Scale bar = 0,1 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 117-119, 18 jun. 1996

A new Fernandezina... 119

(MACN) from same locality probably belongs to the same species.

Acknowledgments. Renner Baptista (Universidade Federal do Rio de Janeiro) provided valuable help

in field work. Helpful comments on a draft of the manuscript were provided by Maria Elena Galiano (MACN).

Support for this project was provided by a graduate fellowship of the Universidad de Buenos Aires to the

former author.

REFERENCES

PLATNICK, N. I. 1975. A Revision of the Palpimanid Spiders of the New Subfamily Otiothopinae (Araneae,

Palpimanidae). Amer. Mus. Novitates, New York, 2562:1-32.

— . 1977. Notes on chilean Palpinanidae (Arachnida, Araneae). J. Arachnol, Lubbock, 3 (3):203-205.

—* . 1993. Advances in Spider Taxonomy 1988-1991; With Synonymies and Transfers 1940-1980. New York,

New York Entomological Society. 846 p.

Recebido em 07.02.1995; aceito em 19.06.1995.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):117-119, 18 jun. 1996

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ANTARCTIC CIRRIPEDIA (CRUSTACEA) COLLECTED BY THE

BRAZILIAN ANTARCTIC PROGRAM (1983-1986)

Paulo S. Young!

Alexandre C. Leta!

ABSTRACT

Seven species of cirripeds were found in Bransfield Strait, Antartic: Australscalpellum

schizmatoplacianum Newman & Ross, 1971. Litoscalpellum compactum (Borradaile, 1916) comb. n., L.

discoveryi (Gruvel, 1906), Anguloscalpellum angulare Cantell 1930) Trianguloscalpellum liberum (Nilsson-

Cantell, 1930), T. magnaecarinae (Nilsson-Cantell, 1930) and Brathylasma corolliforme (Hoek, 1883).

Trianguloscalpellum compactum is transferred to Litoscalpellum Newman & Ross, 1971, due to areduction in

the size of plates. Five of the species have their geographic distribution restricted to the Antarctic Peninsula;

only L. discoveryi and B. corolliforme are more widespread distributed in the Antarctic.

KEYWORDS. Crustacea, Cirripedia, Antarctic, Taxonomy.

INTRODUCTION

The Brazilian Antarctic Program between 1983 and 1986 carried out four

expeditions (PROANTAR I to IV) which set out during the period dredged between 61º

and 65° S (NONATO et al., 1992). The purpose of this paper is to identify the species

collected from these expeditions and review those with taxonomic problems.

Abbreviations cited in the text: CH, Capitulum height; CR, Carino-rostral diameter;

MNR]J, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro; PH, Peduncle height.

Scalpellidae, Brochiinae

Australscalpellum schizmatoplacianum Newman & Ross, 1971

Australscalpellum schizmatoplacianum NEWMAN & ROSS, 1971: 131, pl. 12d, e, fig. 66.

Material examined. ANTARCTIC: 63°25°S, 62°19’W, 14.11.1986, 135m, 1 specimen, CH, 3.8 mm, PH,

1.7 mm (MNRJ 2554).

Geografic distribution. Antarctic Peninsula.

Remarks. The specimen examined is not fully developed. It agrees with NEWMAN

1. Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Quinta da Boa Vista, 20940-040, Rio de Janeiro, RJ, Brazil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 121-126,18 jun. 1996

122

YOUNG & LETA

& ROSS (1971) description, except for the straight occludent margins of tergum and

scutum, both with the same length, and by the umbonal region of inframedian latus not

being elevated.

Scalpellidae, Meroscalpellinae

Litoscalpellum compactum (Borradaile, 1916) comb. n.

Scalpellum compactum BORRADAILE, 1916: 130, fig. 3; NILSSON-CANTELL, 1921: 198, fig. 30.

Trianguloscalpellum compactum; ZEVINA, 1981: 307, fig. 231.

Arcoscalpellum compactum; NEWMAN & ROSS: 58, fig. 24.

Material examined. ANTARCTIC: 62º30"S, 54º16'W, 28.1.1985, 415m, 14 specimes on gorgonian

axes, CH, 2.4 - 7.9 mm, PH, 1.2 - 4.3 mm (MNRJ 2552).

Geographic distribution. Antarctic Peninsula.

Remarks. The specimens agree with the redescription of NILSSON-CANTELL

(1921), presenting specimens of many distinct stages of development. The capitulum is

very enlarged at the basal region in the fully developed specimens, its breadth equaling

its width. The carinal latus 1s divided in two areas, a very small and concave superior one

and an inferior larger and convex area. The umbo is situated at carinal margin between

the two areas (figs. 1-3). Some rostra are narrow and triangular in shape, and present two

small distal lateral projections (figs. 4-6). The capitular plates present thin inconspicuous

growth lines. These specimens show that L. compactum presents a symmetric reduction

during ontogeny, thus justifying the inclusion of this species in the genus Litoscalpellum.

Besides, the carina presents a dislodged umbo from the apical to a subapical region in

larger specimens. Although apparently a characteristic of the family Scalpellidae, this

feature has development quite distinct from that of species included in this family. The

numbers of articles of the cirri of three specimens are listed in table I. L. compactum was

previously collected between 75 and 150 meters depth (NEWMAN & ROSS, 1971) being

herein recorded from 415 meters.

Litoscalpellum discoveryi (Gruvel, 1906)

(Fig. 7)

Scalpellum discoveryi GRUVEL, 1906: 271; 1907: 2, fig. 4-6; NILSSON-CANTELL, 1928: 11, fig. 5; 1931:

mo 1939: 230, tier 2.

Scalpellum (Arcoscalpellum) discoveryi; BORRADAILE, 1916: 128, fig. 1; BAGE,1938:5.

Scalpellum (Arcoscalpellum) nynphonis; BORRADAILE, 1916: 129, fig. 2.

Litoscalpellum discoveryi, NEWMAN & ROSS, 1971: 117, pl. 10f, fig. 61; ZEVINA, 1981: 124, fig. 86.

Material examined. ANTARCTIC: 62º48"S, 54°20’W, 18.1.1983, 280m, 7 specimens on Bryozoa,

CH, 1.7 - 3.3 mm, PH, 0.7 - 1.4 mm (MNRJ 2548).

Geographic distribution. Ross Sea to Antarctic Peninsula; South Georgia.

Remarks. GRUVEL (1907) and NEWMAN & ROSS (1971) commented that this

species was found on Pycnogonida. The specimens reported herein were only found on

colonies of Bryozoa. The specimens are little developed (fig. 7), lacking the reduced

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 121-126, 18 jun. 1996

Antartic Cirripedia (Crustacea)... 123

Table I. Counts of cirri articles and caudal appendage from three specimens of Litoscalpellum compactum

(Borradaile, 1916) from Antarctic (+, broken appendage, CA, caudal appendage).

I II HI IV Dá VI CA

MNRJ 2552a 6/7 6 pl 12/12 14/13 14+/13 14/14 l

6/7 11/12 14/13 13/14 14/11+ 15/14 1

MNRJ 2552b 6/8 1255/12 14/14 13/13 14/13+ 14+/15 1

7/8 st ss 14/14 14/12+ 16/16 16/14 1

MNRJ 2552h 6/7 13/11 14/14 14/15 16/15 15/15 1

3/7 12/11 14/13 14/14 14/15 14+/13+ 1

plates described by GRUVEL (1907). This reduction starts to appear when the specimens

are only 10 mm of height. Moreover, the appearance of the apicotergal arm of scutum

also appears in specimens larger than 10 mm, as can be noted in NILSSON-CANTELL

(1939: 230, fig. 2). The upper latus has a gradual change in shape with development.

Smaller specimens have a quadrangular shape, with arounded angle near the inframedian

latus. As the specimens grow, this angle turns on a small straight margin, making a

pentagonal appearance. The inframedian latus has, beyond the triangular shape, a projection

directed from the apical region to the upper-latus. This feature (fig. 7) is not cited by other

authors. The mandible bears three teeth, but the lower angle is less pectinated than in the

specimens examined by NILSSON-CANTELL (1939, fig. 2) and NEWMAN & ROSS

(1971, fig. 61). The first maxilla has a deep median notch, and presents three large spines

on the upper margin and several smaller spines on lower margin, as had been noted by

NEWMAN & ROSS (1971). NILSSON-CANTELL (1928) observed a maxilla without

notch and with few spines. The small unarticulate appendage does not bear setae. The

numbers of articles of the cirri of one of the specimens (MNRJ 2548) are CI, 5/6, CH, 8/

9, CHI, 10/10, CIV, 10/11, CV, 9/9, CVI, 11/11, and, caudal appendage 1.

Scalpellidae, Arcoscalpellinae

Anguloscalpellum angulare (Nilsson-Cantell, 1930)

Scalpellum angulare NILSSON-CANTELL, 1930: 239, fig. 7; 1939: 228.

Arcoscalpellum angulare; NEWMAN & ROSS, 1971: 48, pl. 9G, fig. 16.

Anguloscalpellum angulare; ZEVINA, 1981: 262, text-fig. 196.

Material examined. ANTARCTIC: 61º44ºS, 57°52’W, 23.1.1984, 310 m, 2 specimens, CH, 4.2 - 4.5

mm; PH, 2.6 - 2.7 mm (MNRJ 2549); 62°48°S, 54°20’W, 18.1.1983, 280 m, 5 specimens, CH, 1.5 - 2.8 mm,

PH, 0.7 - 1.3 mm (MNRJ 2547); 63°17’S, 62°30’W, 14.11.1986, 157 m, 1 specimen, CH, 4.8 mm, PH, 2.9 mm

(MNR]J 2558); 63°25’S, 62°19’W, 14.11.1986, 135 mm, 3 specimens, CH, 3.7 - 5.1 mm, PH, 1.9 - 2.7 mm

(MNRJ 2553).

Geographic distribution. Antartic Peninsula.

Remaks. These specimens are easily distinguished by their very long bristles on

cuticle, the widely spaced growth ridges, and the inframedian latus with an elevated

apical region (NILSSON-CANTELL, 1930). Due to the distinct sizes of the specimens

collected, some distinctions may be observed. The small individuals have the scutum

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 121-126,18 jun. 1996

124 YOUNG & LETA

with a recurved apex overlapping the tergum, as well as an occludent margin convex in

outline near its apex. Anteriorly, the rostrum has a rectangular shape due to the lateral

projections, posteriorly becoming triangular and well developed. The inframedian latus

is little projected in small specimens.

Trianguloscalpellum liberum (Nilsson-Cantell, 1930)

(Fig. 8)

Scalpellum liberum NILSSON-CANTELL, 1930: 233, figs. 3,4; 1931: 7.

Arcoscalpellum liberum: NEWMAN & ROSS, 1971: 68, pl. 9h, fig. 32.

Trianguloscalpellum liberum; ZEVINA, 1981: 302, fig. 228.

Material examined. ANTARCTIC: 61º44ºS, 57°52’W, 23.1.1984, 310 m, 3 specimens, CH, 1.8 - 3.9

mm, PH, 0.3 - 2.8 mm (MNRJ 2550); 62º30'S, 54º16'W, 28.1.1985, 412m, 1 specimen, CH, 3.9 mm; PH, 3.2

mm (MNRJ 2551); 63°28°S, 62°31’W, 13.11.1986, 168m, 5 specimens, CH, 5.5 - 6.3 mm, PH, 3.4 - 5.3 mm

(MNRJ 2557).

Geographic distribution. Antarctic Peninsula.

Remarks. NILSSON-CANTELL (1930) observed plates “beautifully sculptured

with growth lines and longitudinal lines”. The specimens observed herein have fully

developed growth lines, but in some specimens the longitudinal lines are inconspicuous.

Besides, the specimens do not present an apico-basal ridge along the carinal latus. A

dissected specimen showed four teeth at the mandible (fig. 8), instead of the three observed

by NEWMAN & ROSS (1971).

Trianguloscalpellum magnaecarinae (Nilsson-Cantell, 1930)

(Figs. 9-10)

. Scalpellum magnaecarinae NILSSON-CANTELL, 1930: 236, figs. 5,6.

Arcoscalpellum magnaecarinae; NEWMAN & ROSS, 1971: 70, fig. 33.

Trianguloscapellum magnaecarinae; ZEVINA, 1981: 299, fig. 226.

Material examined. ANTARCTIC: 63º17'S, 62°30’W, 14.11.1986, 157 m, 1 specimen, CH, 9.5 mm,

PH, 3.9 mm (MNRJ 2559); 63º28'S, 62°31’W, 13.11.1986, 168 m, 1 specimen, CH, 6.0 mm, PH, 3.3 mm

(MNRIJ 2560).

Geographic distribution. Antarctic Peninsula.

Remarks. Both specimens have few radial lines, and are distinct only on the carina

and on carinal region of the tergum, upper latus and carinal latus. Besides, the scutum

apex overlaps the tergum and has a straight occludent margin. One of the specimens had

its umbo of carinal-latus removed from the apex (figs. 9, 10) to the medial region of the

carinal margin.

Bathylasmatidae

Bathylasma corolliforme (Hoek, 1883)

Bathylasma corolliforme; NEWMAN & ROSS, 1971: 143 (synonymy).

Material examined. ANTARCTIC, 61°08’S, 54°34’W, 1.11.1986, 240 m, 5 specimens and fragments,

CR, 2.3 - 5,7 cm (MNRJ 2555); 63°28’S, 62°31’W, 13.11.1986, 168 m, 18 specimens and fragments, CR, 0,8 -

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 121-126, 18 jun. 1996

Antartic Cirripedia (Crustacea)... 125

Figs. 1-10. Litoscalpellum compactum (Borradaile), MNRJ 2552, 1-3, right lateral view of distinct stages of

development (growth lines are not represented); 4-6, rostral view. L. discoveryi (Gruvel), MNRJ 2548, 7, right

lateral view. Trianguloscalpellum liberum (N.-Cantell), MNRJ 2557, 8, mandible. T. magnaecarinae (N.-

Cantell), MNRJ 2559-2560, 9-10, right carinal-latus of two specimens. Figs. 1-7, 9-10, scale bar Imm; fig. 8,

2mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 121-126,18 jun. 1996

126 YOUNG & LETA

2,7 cm (MNRJ 2556).

Geographic distribution. Circumantartic, Kerguelen Islands, South Sandwich Islands

and South Georgia.

Remarks. Species common to Antarctic region (HOEK, 1883: 155; NEWMAN &

ROSS, 1971: 143).

Acknowledgments. To Dr. Edmundo Nonato (Instituto Oceanográfico, Universidade de São Paulo)

for the donation of the material included in this study, Dr. Gustavo Nunan (Museu Nacional, Universidade

Federal do Rio de Janeiro) for comments on the manuscript.

REFERENCES

BAGE, F. 1983. Cirripedia. Austr. Antarct. Exped. 1911-1914, Sci. Rep. Zool. Bot.,Ser. C, 2(7):5-14.

BORRADAILE, L. A. 1916. Crustacea. Part III. Cirripedia. Br. Antarct. Terra Nova Exped. 1910-1913,

Zool., London, 3: 127-136.

GRUVEL, A. 1906. Cirrhipédes du Discovery. Bull. Mus. natn. Hist. nat. Paris, Paris 12: 270-273.

— . 1907. Crustacea. VI. Cirrhipedes. Nat. Antarct. Exped. Nat. Hist. Zool. Bot., London, 3:1-4.

HOEK,P.P.C. 1883. Report on the Cirripedia collected by H. M. S.Challenger during the years 1873-76. Rep.

scient. Results Voy. Challenger. Zool., London, part 25, 8: 1-169.

NEWMAN, W.A. & ROSS, A. 1971. Antarctic Cirripedia. Antarct. Res. Ser. , Washington, 14: 1-257.

NILSSON-CANTELL, C.A. 1921. Cirripeden-Studien. Zur Kenntnis der Biologie, Anatomie und Systematik

dieser Gruppe. Zool. Bidr. Upps.,Uppsala, 7: 75-397.

— . 1928. Studies on cirripedes in the British Museum (Nat.Hist.). Ann. Mag. Nat. Hist., London, Ser. 10, 2

(7):1-39.

__. 1930. Thoracic cirripeds collected in 1925-1927. Discovery Rep., Cambridge, 2: 223-260.

__. 1931. Cirripeds from the Indian ocean and Malay archipelago in the British Museum (nat. Hist.), London.

Ark. Zool. Uppsala, 23A(18): 1-12.

__. 1939. Thoracic cirripedes collected in 1925-1936. Discovery Rep., Cambridge, 18: 223-238.

NONATO, E. F.; PETTI, M.A.V.; PAIVA, PC. de & BRITO, T.A.S. 1992. Programa Antártico Brasileiro:

Amostragem de organismos bentönicos realizadas nas seis primeiras expedicöes (1982 a 1988), com a

participação do N. /Oc. “Prof. W. Besnard”. Relat. int. Inst. oceanogr. Univ. S. Paulo, São Paulo (32):1-

12.

ZEVINA, G.B. 1981. Barnacles of the suborder Lepadomorpha of the world ocean. I. Family Scalpellidae.

Fauna SSSR, Leningrad, 127:1-406 (in russian).

Recebido em 20.06.1994; aceito em 20.06.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 121-126, 18 jun. 1996

AVES QUE VISITAM UMA FIGUEIRA ISOLADA EM AMBIENTE

ABERTO, ESPIRITO SANTO, BRASIL

Maria Martha Argel-de-Oliveira! ?

Rodolfo Antônio de Figueiredo !

ABSTRACT

BIRDS VISITING AN ISOLATED FIG-TREE IN OPEN LANDSCAPE, ESPÍRITO SANTO, BRAZIL.

Thirty species of birds were observed at an isolated tree of Ficus clusiifolia Shott (Moraceae) at Reserva

Florestal de Linhares, Espírito Santo, Brazil, in July 17-27, 1992. Twenty-two of these species consumed its

syconia, and most of them are probable seed dispersers, including the three most frequent visitors, Thraupis

sayaca (L., 1766), T. palmarum (Wied, 1821) and Euphonia chlorotica (L., 1776). These three are, however,

pulp mashers, and may be somewhat inefficient in carrying away the seeds. The only seed predator is Brotogeris

tirica (Gmelin, 1788). Most of the species frequented also forest habitats (chiefly forest border) and probably

carry fig seeds to these habitats. Isolated fig trees seems to be heavily visited and may represent an important

food resource to frugivorous birds.

KEYWORDS. Birds, Espírito Santo, Ficus clusiifolia, frugivory, ornithochory.

INTRODUÇÃO

O desmatamento de florestas tropicais muitas vezes deixa vestígios da antiga ve-

getação, como fragmentos florestais, cercas vivas e árvores isoladas. Há alguns anos, o

estudo da fauna de fragmentos florestais e de sua dinâmica tem ocupado grande número

de pesquisadores nas regiões tropicais, inclusive no sudeste brasileiro (WILLIS, 1979;

FONSECA, 1989, 1991; MOTTA-JÚNIOR, 1990). A importância das árvores isoladas

para a fauna nativa tem merecido menor atenção, embora sejam comuns nas pastagens

brasileiras. São, em geral, plantas de grande porte, poupadas de corte por terem frutos

comestíveis ou por fornecerem sombreamento. São poleiros naturais para as aves que

buscam descanso, proteção ou alimento (GUEVARA & LABORDE, 1990) e muitas

vezes constituem pontos de parada para animais florestais, que se deslocam entre rema-

nescentes florestais. Para algumas espécies animais florestais de exigências ecológicas

1. Instituto de Biologia, Universidade Estadual de Campinas. C. Postal 6109. CEP 13083-970. Campinas, SP, Brasil. (Bolsista CAPES, curso de

Pós-graduação em Ecologia)

2. Av. Irerê, 198. CEP 04064-000. São Paulo, SP, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 127-134, 18 jun. 1996

128 ARGEL-DE-OLIVEIRA & FIGUEIREDO

menos estritas, a permanência desses elementos ameniza os efeitos negativos que a alte-

ração radical da paisagem acarreta sobre suas populações. Os recursos oferecidos po-

dem ser explorados também pelos animais do ambiente aberto circundante.

Plantas zoocóricas isoladas têm o atrativo adicional de oferecerem alimento

para animais que incluem frutos em suas dietas. Nesse contexto, as figueiras, que atin-

gem grande tamanho e que frequentemente permanecem de pé após desmatamentos,

podem ter papel de destaque. Sua frutificação é abundante e os sicônios, macios, peque-

nos e com sementes também pequenas, são aproveitados facilmente e por grande núme-

ro de aves e de mamíferos (TREJO-PÉREZ, 1976; BREITWISCH, 1983; JORDANO,

1983; SCOTT & MARTIN, 1984; WHEELWRIGHT et al., 1984; COATES-ESTRADA

& ESTRADA, 1986; GUEVARA & LABORDE, 1993). Se em circunstâncias normais

os figos já são considerados, por muitos autores, como recursos-chave para os frugívoros

de florestas tropicais (TERBORGH, 1986), na situação de isolamento é provável que a

importância das figueiras cresça.

Analisamos a visitação de aves a uma figueira isolada, em frutificação, no meio

de uma área aberta em terreno originalmente ocupado por Floresta Atlântica, para deter-

minar que espécies utilizavam a planta, de que forma o faziam e quais suas característi-

cas ecológicas.

MATERIAL E MÉTODOS

Área de estudo. O trabalho foi desenvolvido na Reserva Florestal de Linhares (RFL) (19º06"-

19º18'S e 39°45’- 40°19’W), município de Linhares, Espírito Santo (Brasil), a uma altitude de 30 m sobre o

nível do mar. O estudo foi conduzido em uma área ajardinada, de fisionomia aberta, próxima a residências e

outras edificações, onde predominam gramados com plantas frutíferas e floríferas esparsas . Nos arredores

imediatos existem remanescentes florestais: uma mata ciliar secundária que se desenvolveu ao longo do córrego

Pau Atravessado, que passa cerca de 200 m ao norte da árvore estudada, e um talhão de mata de tabuleiro em

bom estado de preservação, que existe a sudoeste e cuja borda dista cerca de 500 m da planta.

A planta estudada é um indivíduo de Ficus clusiifolia Schott (sensu CARAUTA, 1989) (Moraceae)

com cerca de 12 m de altura e um diâmetro de aproximadamente 25 m e que, à época do estudo, encontrava-se

em plena frutificação. Os sicônios dessa espécie medem entre 4 e 8 mm de diâmetro por 3 a 6 mm de altura

(CARAUTA, 1989). Figos amarelos (quase maduros), alaranjados e vermelhos (maduros) estiveram disponí-

veis na planta durante quase todo o período de estudo, exceto nos últimos dias, após uma forte ventania que

derrubou todos, menos os amarelos. A árvore foi observada entre 17 e 27 de julho de 1992 por um total de

16h40min, que cobriram todo o período entre o nascer e o pôr-do-sol (exceto o horário entre 12h15min e

13h20min). As observações foram feitas a partir de pontos que distavam cerca de 10 m da planta, com o auxílio

de binóculos (8x).

Foram anotadas as espécies visitantes, a ocorrência ou não de consumo de sicônios e a forma de

coleta e ingestão. A folhagem cerrada e a movimentação constante das aves impediam o acompanhamento de

cada indivíduo que chegava, tornando impossível quantificar o número de visitas e o tempo de permanência de

cada ave. Uma indicação sobre quais as aves mais assíduas da planta foi obtida dividindo o período de obser-

vação em intervalos com 10 minutos de duração e anotando as espécies presentes em cada intervalo. O cálculo

da frequência (F) para cada espécie foi F=n/N, onde: n = número de intervalos em que uma dada espécie foi

observada e N = número total de intervalos em que houve observação (N = 100). Os mesmos fatores prejudica-

ram a determinação do número de indivíduos de cada espécie que fregüentavam a planta simultaneamente. E

apresentado o número aproximado de aves observadas chegando juntas. Em alguns casos, as aves formavam

pequenos grupos, cujo tamanho é indicado, mas mais de um desses grupos podiam estar presentes ao mesmo

tempo. Foram anotados, ainda, os encontros agressivos (perseguições em vôo, aves pousadas sendo deslocadas

por outras) e a espécie a que pertenciam o indivíduo agressor e o agredido.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):127-134, 18 jun. 1996

Aves que visitam uma figueira isolada... 129

RESULTADOS

Os sicônios de F. clusiifolia foram explorados como alimento por 22 espécies de

aves (tab. I). A maior parte dessas aves (N=18) tem dieta mista, composta por invertebrados

e frutos, variando a importância relativa de cada um desses itens. São exceções

Pteroglossus aracari, Euphonia violacea e É. chlorotica, espécies em que a ingestão de

matéria animal parece ser muito rara ou inexistente (HAVERSCHMIDT, 1968; SNOW

& SNOW, 1971; REMSEN et al., 1993), e Brotogeris tirica, que se alimenta não só da

polpa dos frutos, mas também de suas sementes (MARCONDES-MACHADO & AR-

GEL-DE-OLIVEIRA, 1988). A maior parte (N=21) frequenta ambientes florestais da

Reserva, quer a borda, quer o interior das matas, embora muitas sejam amiúde observa-

das também nos ambientes abertos (N= 11). Apenas Ramphocelus bresilius é caracterís-

tica de áreas abertas, vegetações arbustivas ou capoeiras pouco desenvolvidas. Assim, as

Tabela I. Aves observadas alimentando-se dos sicônios de Ficus clusiifolia, em Linhares (Espírito Santo), entre

os dias 17 e 27 de julho de 1992. (1, fregiência de ocorrência na planta estudada (número de intervalos em que

a espécie foi observada / número de intervalos de observação); 2, ambientes preferenciais de ocorrência,

segundo observações na região: A - ambiente aberto; B - borda; M - mata (em ordem decrescente de frequência

de observação); 3, F - frugívora; G - granívora; I - insetívora (inclui outros invertebrados): L - folhivora; N -

nectarívora (em ordem de importância: frequência de consumo e/ou volume de material ingerido); 4, V - em

“ vôo; P - pousado (dispostos em ordem decrescente de frequência de utilização pela ave; quando separados por

/, os modos egiiivalem em importância); 5, I - ingere sicônios inteiros, sem mandibulação; P - arranca pedaços

de sicônios presos à planta; Mi - masca e engole inteiros; Mc - masca e deixa cair todo ou em parte; M* -

mandibula brevemente, sem mascar.

Espécies Fregiiência! Ambiente? Dieta” Ingestão de sicônios

Coleta” Processamento”

Thraupis sayaca (Linnaeus, 1766) 0,97 B/A FINL EM; Mi Mc

Thraupis palmarum (Wied, 1821) 0,91 B/A FIN PV Mi Mc

Euphonia chlorotica (Linnaeus, 1776) 0,83 B F E Mc Mi

Brotogeris tirica (Gmelin, 1788) 0,46 B/A G F Je Mi

Euphonia violacea (Linnaeus, 1758) 0,43 M/B F E Mc Mi

Dacnis cayana (Linnaeus, 1766) 0,39 B/M IFN P McMi

Tyrannus melancholicus Vieillot, 1819 0,35 A/B IF V I

Turdus leucomelas Vieillot, 1818 0,34 B/A FI VB I

Pitangus sulphuratus (Linnaeus, 1766) 0,33 A/B IR DE: I

Turdus amaurochalinus Cabanis 1851 0,33 A/B FI V/P IM*

Elaenia flavogaster (Thunberg, 1822) 0,23 A/B FI N I

Saltator maximus (Müller, 1776) 0,21 B FI PV Mi Mc

Megarhynchus pitangua (Linnaeus, 1766) 0,16 B IF Vi P I

Cacicus haemorrhous (Linnaeus, 1766) 0,16 B/M IF IE Mi

Ramphocelus bresilius (Linnaeus, 1766) 0,15 A FI PV Mc

Turdus rufiventris Vieillot, 1818 0,14 B/A FI P I

Parula pitiayumi (Vieillot, 1817) 0,11 B IF P Mc

Myiozetetes similis (Spix, 1825) 0,11 B IF V LM*

Celeus flavescens (Gmelin, 1788) 0,08 M IF P I

Pteroglossus aracari (Linnaeus, 1758) 0,03 M/B F Pp I

Elaenia sp. 0,03 A/B FI 2 I

Platycichla flavipes (Vieillot, 1818) 0,03 B/M FI P I

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 127-134, 18 jun. 1996

130 ARGEL-DE-OLIVEIRA & FIGUEIREDO

Tabela Il. Aves que pousaram em Ficus clusiifolia sem se alimentarem dos sicônios, em Linhares (Espírito

Santo), entre os dias 17 e 27 de julho de 1992. (1, frequência de ocorrência na planta estudada (número de

intervalos em que a espécie foi observada / número de intervalos de observação); 2, ambientes preferenciais de

ocorrência, segundo observações na região: A - ambiente aberto; B - borda; M - mata (em ordem decrescente

de freqiiência de observação): 3, F - frugívora; I - insetívora (inclui outros invertebrados); N - nectarívora (em

ordem de importância: frequência de consumo e/ou volume de material ingerido).

Espécies Frequência! Ambiente? Dieta” Utilização da planta

Guira guira (Gmelin, 1788) 0,01 A I local de pouso

Glaucidium brasilianum (Gmelin, 1788) 0,02 M/B I poleiro de alimentação

Eupetomena macroura (Gmelin, 1788) 0,04 B/A NI captura de insetos?

Furnarius rufus (Gmelin, 1788) 0,01 A I local de pouso

Machetornis rixosa (Vieillot, 1819) 0,01 A I local de pouso

Camptostoma obsoletum (Temminck, 1824) 0,01 B/A IF captura de insetos; possível

alimentação com sicônicos

Mimus saturninus(Lichtenstein, 1823) 0,01 A FIN possível alimentação com

sicönicos

Nemosia pileata (Boddaert, 1783) 0,01 B IF alimentação com sicônios

sementes dessa figueira estão sendo transportadas, tanto para o interior e à borda da

mata, quanto para os ambientes abertos.

Doze espécies ingerem inteiros os sicônios, duas delas às vezes mascando bre-

vemente; dez espécies maceram os figos antes da ingestão, sendo que oito delas foram

vistas deixando cair partes dos frutos (inclusive cinco das seis espécies mais comuns na

planta) (tab. I). A maioria das espécies ingeriu principalmente sicônios de colorido

alaranjado, exceto Cacicus haemorrhous, que foi vista ingerindo apenas sicônios ver-

melhos, Megarhynchus pitangua e Turdus leucomelas, que preferiram os vermelhos aos

outros, e Ramphocelus bresilius, vista ingerindo apenas um sicônio amarelo. Em geral,

as aves coletaram frutos amarelos apenas quando não havia outros disponíveis, como

ocorreu com Euphonia chlorotica, E. violacea, Thraupis sayaca e Saltator maximus.

A maioria das espécies chegava à planta sozinha ou grupos de duas ou três,

exceto Brotogeris tirica (grupos de até 15); Preroglossus aracari (até 4), Cacicus

haemorrhous (em uma ocasião, 4), Euphonia chlorotica (até 6), Thraupis sayaca (gru-

pos com 4 ou 5) e Thraupis palmarum (grupos com até 9). Oito espécies de aves visita-

ram a planta sem se alimentarem dos sicônios (tab. II).

Foram registrados 29 encontros agressivos entre as aves visitantes (tab. III),

dos quais 18 foram intra-específicos. As aves do gênero Thraupis foram responsáveis

pela maior parte deles: houve 13 ataques de T. palmarum a outras aves e 10 de T. sayaca

(com, respectivamente, nove e seis a aves da mesma espécie).

DISCUSSÃO

Mesmo estando isolada em meio a um ambiente muito diferente de seu ambiente

de ocorrência original, a planta é visitada por 30 espécies de aves, das quais 21 constitu-

em dispersores potenciais de suas sementes. Dentre todas, Brotogeris tirica é a única

que potencialmente inviabiliza as sementes que ingere, pois deve destruí-las para apro-

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):127-134, 18 jun. 1996

Aves que visitam uma figueira isolada... 131

Tabela II. Encontros agressivos entre aves observados em Ficus clusiifolia, em Linhares, Espírito Santo, entre

os dias 17 e 27 de julho de 1992. Espécies agredidas: 1, Machetornis rixosa; 2, Tyrannus melancholicus; 3,

Turdus leucomelas; 4, Dacnis cayana; 5, Euphonia chlorotica; 6, Euphonia sp.; 7, Thraupis sayaca; 8, Thraupis

palmarum.

Especie agredida

Especie agressora 1 2 3 4 5 6 7 8

Machetornis rixosa |

Myiozetetes similis l

Pitangus sulphuratus l

Turudus leucomelas . 1

Dacnis cayana 1

Euphonia chlorotica l

Thraupis sayaca l 6 3

Thraupis palmarum 1 l D 9

veitar seus nutrientes, como os outros Psittacidae (JORDANO, 1983). Das restantes,

algumas provavelmente também o são, havendo na literatura referências a sua frugivoria:

Camptostoma obsoletum (HAVERSCHMIDT, 1968; FITZPATRICK, 1980), Mimus

saturninus (ARGEL-DE-OLIVEIRA, 1989) e Nemosia pileata (ISLER & ISLER, 1987;

PINESCHI, 1990). Espécies insetívoras provavelmente usam a planta como local de

captura de insetos (Glaucidium brasilianum, Eupetomena macroura e também C.

obsoletum e N. pileata). A planta deve ser usada por essas espécies, ainda, como poleiro

para descanso ou para a observação dos arredores. O uso de árvores isoladas como ponto

de observação é comum, por exemplo, em Guira guira (MARINO, 1981) e em M.

saturninus (ARGEL-DE-OLIVEIRA, 1989).

O número de espécies vistas consumindo sicônios é comparável ao verificado por

outros autores que estudaram figueiras neotropicais em ambiente de mata: CRUZ (1974)

observou 19 espécies de aves alimentando-se de figos, JORDANO (1983) observou 22

e WHEELWRIGHT et al. (1984) observaram 21 nas espécies de Ficus que estudaram, o

primeiro na Jamaica, os outros na Costa Rica. Em mata semidecídua do planalto paulista,

FIGUEIREDO (1994) encontrou 12 espécies visitando as figueiras.

E possível que o fato de estar isolada em meio de ambiente aberto não interfira de

forma negativa na intensidade de visitação por dispersores potenciais e na taxa de remo-

ção de sementes de uma planta originalmente florestal, como a aqui estudada. Por exem-

plo, ao estudarem a dispersão de Stemmadenia donnell-smithii (Rose) na Costa Rica,

McDIARMID et al. (1977) verificaram que as plantas em ambiente aberto apresenta-

vam maior freqiiência de visitação por aves, maior número de espécies visitantes e mai-

or taxa de remoção de sementes do que as plantas localizadas em florestas fechadas. No

entanto, a composição específica do universo de dispersores pode ser alterada, e maior

número de sementes pode acabar sendo removido para locais desfavoráveis ao desen-

volvimento da plântula. Sementes de figueiras germinam apenas quando expostas a con-

dições especiais de umidade constante, luminosidade e exposição a microorganismos

(RAMIREZ, 1976; LISCI & PACINE, 1994). A remoção intensa de sementes por aves

que frequentam ambientes diversos daquele onde originalmente a planta ocorre pode

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 127-134, 18 jun. 1996

132 ARGEL-DE-OLIVEIRA & FIGUEIREDO

acarretar o desperdício de uma quantidade considerável de sementes, comprometendo a

eficiência da planta-mãe para a manutenção dos níveis populacionais da espécie, caso

tais ambientes não sejam propícios para o estabelecimento das plântulas. No presente

caso, além de outras menos assiduas, as duas espécies que mais fregüentaram a planta -

Thraupis sayaca e T. palmarum - são comumente encontradas em ambientes abertos e

devem carregar muitas sementes para essas fisionomias. Faltam, no entanto, estudos que

avaliem a resposta germinativa de sementes de F. clusiifolia expostas a diferentes condi-

ções ambientais. Pode ser que justamente a diversidade de hábitat dos dispersores desse

indivíduo seja importante para a colonização de áreas onde atualmente a espécie está

ausente.

Muitas das espécies que se alimentam dos frutos, inclusive as mais frequentes na

planta (T. sayaca, T. palmarum, Euphonia chlorotica), são maceradoras (sensu ARGEL-

DE-OLIVEIRA, 1992), que derrubam muitos dos sicônios após intensa maceração atra-

vés de movimentos mandibulares. Estudando outra espécie de Ficus no Estado do Espí-

rito Santo, M.M. Argel-de-Oliveira (observação pessoal) verificou que sicônios derru-

bados após a maceração continham cerca de 42% das sementes férteis contidas em sicônios

coletados na planta. Por um lado, isso indica que, durante a maceração, ocorre a remo-

ção e Ingestão de sementes férteis. Por outro, revela uma ineficiência na retirada das

sementes que também compromete a eficiência dessas aves como dispersores. Além

dessas três espécies, outras seis (incluindo B. tirica, que não pode ser considerado

dispersor) maceram frutos, que são derrubados por várias delas, o que indica uma gran-

de perda de sementes por parte da planta. A preferência por sicônios alaranjados ou

vermelhos pode ser devida à maior dificuldade em macerar os frutos amarelos, ainda

imaturos.

Quanto à agressividade entre as aves que fregüentaram a figueira, nota-se que

mais de 60% dos encontros agressivos foram intra-específicos. A maior incidência de

agressividade entre indivíduos da mesma espécie também foi observada em outros tra-

balhos de frugivoria (LECK, 1969; CRUZ, 1974; FOSTER, 1987). O envolvimento de

um determinado táxon na maioria dos eventos agressivos, como ocorre no presente caso

com as aves do gênero Thraupis, é reportado por FOSTER (1987). Possivelmente, nes-

ses casos, uns poucos indivíduos dessas determinadas espécies estejam envolvidos, pois,

segundo PRATT (1984), a ocorrência de agressividade em plantas com frutos é incomum,

e está relacionada principalmente à presença de indivíduos que defendem territórios de

alimentação.

Agradecimentos: À Fundação M. Brown e Companhia Vale do Rio Doce, pelo apoio financeiro ao

Curso de Ecologia de Campo I/II (Curso de Pós-Graduação em Ecologia, IB, UNICAMP), durante o qual foi

desenvolvido este trabalho. Agradecemos também as valiosas sugestões apresentadas por dois revisores anôni-

mos.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ARGEL-DE-OLIVEIRA, M.M. 1989. Eco-etologia do sabiá-do-campo Mimus saturninus (Lichtenstein,

1823) (Passeriformes, Mimidae) no Estado de São Paulo. 131 p. Dissertação (Mestrado em Ecologia)

Instituto de Biologia, UNICAMP. Campinas. [Não publicada]

ARGEL-DE-OLIVEIRA, M.M. 1992. Comportamento alimentar de aves em Trichilia micrantha Benth.

(Meliaceae) na Serra dos Carajás, Pará. Bolm Mus. par. Emílio Goeldi, ser. Zool., Belém, 8(2): 305-313.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):127-134, 18 jun. 1996

Aves que visitam uma figueira isolada... 193

BREITWISCH, R. 1983. Frugivores at a fruiting Ficus vine in a Southern Cameroon tropical wet forest.

Biotropica, Washington, 15(2): 125-128.

CARAUTA, J.PP. 1989. Ficus (Moraceae) no Brasil: conservação e taxonomia. Albertoa, Rio de Janeiro, 2:

1-365.

COATES-ESTRADA,R. & ESTRADA,A. 1986. Fruiting and frugivores at a strangler fig in the tropical rain

forest of Los Tuxtlas, Mexico. J. trop. Ecol., Cambridge, 2: 349-357.

CRUZ, A. 1974. Feeding assemblages of Jamaican birds. Condor, Santa Clara, 76(1): 103-107.

FIGUEIREDO, R.A. de. 1994. Fenologia e polinização de três espécies de figueiras em mata semidecídua

da região de Campinas, SP. 116 p. Dissertação (Mestrado em Ecologia) Instituto de Biologia, UNICAMP.

Campinas [Não publicada]

FITZPATRICK, J.W. 1980. Foraging behavior of neotropical Tyrant Flycatchers. Condor, Santa Clara, 82:

43-57.

FONSECA, G.A.B. 1989. Small mammal species diversity in Brazilian tropical primary and secondary forests

of different sizes. Revta bras. Zool., Curitiba, 6(3): 381-421.

— . 1991. Muitas reservas pequenas: uma solução? Ciência Hoje, Rio de Janeiro, 13(76): 18-19.

FOSTER, M.S. 1987. Feeding methods and efficiencies of selected frugivorous birds. Condor, Santa Clara,

89: 566-580.

GUEVARA, S.S. & LABORDE, D.J. 1990. Uso de árboles aislados para el manejo de pastizales tropicales: su

contribución al mantenimiento de la diversidad de espécies de la selva. In: ATELIER SUR

L’AMENAGEMENT ET LA CONSERVATION DE L’ECOSYSTEME FORESTIER TROPICAL

HUMIDE, Caiena, Guiana Francesa, 1990. Actes. MAB/UNESCO - MAB/França, IUFRO-FAO. p. 188-

213:

— . 1993. Monitoring seed dispersal at isolated standing trees in tropical pastures: consequences for local

species availability. Vegetatio, Haia, 107/108: 319-338.

HAVERSCHMIDT, F. 1968. Birds of Surinam. Edimburgo, Oliver & Boyd. 445 p.

ISLER, M.L. & ISLER, PR., 1987. The tanagers. Oxford, Oxford University. 404 p.

JORDANO, P. 1983. Fig-seed predation and dispersal by birds. Biotropica, Washington, 15(1): 38-41.

LECK, C.F. 1969. Observations of birds exploiting a Central American fruit tree. Wilson Bull., Ann Harbor,

81: 264-269.

LISCI, M. & PACINE, E. 1994. Germination ecology of druplets of the fig (Ficus carica L.). Bot. J. Linnean

Soc., Londres, 114: 133-146.

MARCONDES-MACHADO, L.O. & ARGEL-DE-OLIVEIRA, M.M. 1988. Comportamento alimentar de

aves em Cecropia (Moraceae), em Mata Atläntica, no Estado de Säo Paulo. Revta bras. Zool., Säo Paulo,

4(4): 331-339.

MARINO, J.H.F. 1981. Notas sobre o comportamento alimentar do anu-branco Guira guira (Gmelin, 1788)

(Cuculiformes, Aves). Semina, Londrina, 7: 121-125.

McDIARMID, R.W.; RICKLEFS, R.E. & FOSTER, M.S. 1977. Dispersal of Stemmadenia donnell-smithii

(Apocynaceae) by birds. Biotropica, Washington, 9(1): 9-25.

MOTTA-JÚNIOR, J.C. 1990. Estrutura trófica e composição das avifaunas de três hábitats terrestres na região

central do Estado de São Paulo. Ararajuba, Rio de Janeiro, 1: 65-71.

PINESCHI, R.B. 1990. Aves como dispersores de sete espécies de Rapanea (Myrsinaceae) no maciço do

Itatiaia, Estados do Rio de Janeiro e Minas Gerais. Ararajuba, Rio de Janeiro, 1: 73-78.

PRATT, T.K. 1984. Examples of tropical frugivores defending fruit-bearing plants. Condor, Santa Clara, 86:

123-129.

RAMIREZ, B.W. 1976. Germination of seeds of New World Urostigma (Ficus) and Morus rubra L. Revta

Biol. trop., São José, 24: 1-6.

REMSEN, J.V.; HYDE, M.A. & CHAPMAN, A. 1993. The diets of Neotropical trogons, motmots, barbets

and toucans. Condor, Lawrence, 95: 178-192.

SCOTT, PE. & MARTIN, R.F. 1984. Avian consumers of Bursera, Ficus, and Ehretia fruit in Yucatán.

Biotropica, Washington, 16(4): 319-323.

SNOW, B.K. & SNOW, D.W. 1971. The feeding ecology of tanagers and honeycreepers in Trinidad. Auk,

Lawrence, 88: 291-322.

TERBORGH, J. 1986. Keystone plant resources in the tropical forest. In: SOULE, M.E. ed. Conservation

biology. The science of scarcity and diversity. Sunderland, Sinauer. p. 330-344.

TREJO-PÉREZ, L. 1976. Diseminación de semillas por aves en “Los Tuxtlas”, Ver. In: GOMEZ-POMPA, A.;

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 127-134, 18 jun. 1996

134 ARGEL-DE-OLIVEIRA & FIGUEIREDO

VAZQUEZ-YANES, C.; RODRIGUES, S.A. & CERVERA, A.B. eds. Regeneraciön de selvas. Mexico,

Continental. p. 448-470.

WHEELWRIGHT, N.T.; HABER, W.A.; MURRAY, K.G. & GUINDON, C. 1984. Tropical fruit-eating birds

and their food plants: a survey of a Costa Rican lower montane forest. Biotropica, Washington, 16(3):

173-192.

WILLIS, E.O. 1979. The composition of avian communities in remanescent woodlots in Southern Brazil.

PapéisAvuls Zool., São Paulo, 33(1): 1-25.

Recebido em 13.09.1994: aceito em 01.09.1995.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):127-134, 18 jun. 1996

ANALISIS MORFOMETRICA DEL COMPLEJO LINFOMIELOIDE DE

MUSTELUS SCHMITTI (CHONDRICHTHYES, TRIAKIDAE)

Elena J. Galindez'

Mario C. Aggio”

ABSTRACT

MORPHOMETRIC ANALYSIS OF THE LYMPHOMYELOID COMPLEX OF MUSTELUS

SCHMITTI (CHONDRICHTHYES, TRIAKIDAE). The morphometric relationships between the principal

hemopoietic foci (spleen, epigonal and Leydig organs) and the body weight of Mustelus schmitti Springer,

1939 are studied. Splenic weight represents 0.18% of the body weight and no significant differences between

sexes were found; the epigonal organ represents 0.37% of the body weight and there were sex differences; the

Leydig organ represents only 0.02% of the body weight. The coexistence of a prominent epigonal organ with a

small spleen allocates M. schmitti in an intermediate position between other chondrichthian species hitherto

studied.

KEYWORDS. Lymphomyeloid complex, morphometry, hemopoietic tissues, Chondrichthyes.

INTRODUCCIÓN

El estudio de la hemopoyesis en peces cartilaginosos tiene especial interes dado

que poseen localizaciones diferentes para las lineas eritrocitaria y granulocitaria,

constituyendo asi un modelo experimental único. Las investigaciones realizadas hasta la

fecha enfocan principalmente aspectos morfológicos (FÄNGE & NILSON, 1985;

FÄNGE, 1987, entre otros) y ocasionalmente fisiológicos (OPDYKE & OPDYKE, 1971;

FÄNGE & JOHANSSON-SJÓBECK, 1975, entre otros). El aspecto mofométrico es

poco conocido y fue considerado únicamente por FANGE (1977, 1982).

El objetivo es caracterizar el sistema linfomieloide de Mustelus schimitti Springer,

1939 para contribuir al conocimiento de la hemopoyesis en peces cartilaginosos.

1. Univesidad Nacional del Sur, Departamento de Biología, Laboratorio de Histologia Animal, San Juan 670 (8000), Bahia Blanca, Argentina.

2. Idem, Laboratorio de Fisiologia Humana.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142, 18 jun. 1996

136 GALINDEZ & AGGIO

MATERIAL Y MÉTODOS

Se observaron 79 ejemplares de M. schmitti provenientes del área de pesca de Bahia Blanca (61°30'-

62º30'W - 38º45-39º45"S), Argentina. Se pesaron en una balanza comercial con precisión de 5 g (peso total =

PT) y se midieron con aproximación de 5 mm. Los tres parénquimas hemopoyéticos de la especie: el bazo, el

örgano epigonal y el órgano de Leydig, se disecaron inmediatamente luego de la captura y se colocaron en

formol neutro 10% en agua de mar, durante un mínimo de 48 horas. Luego se pesaron en una balanza A&D

Electronic Balances, modelo ER-180 A, con precisión de 1 mg (peso del bazo = BZ; peso del órgano epigonal

= EPI y peso del órgano del Leydig = LEY).

Para el estudio morfométrico de los órganos hemopoyeticos se estimaron por cuadrados mínimos las

rectas de regresión entre el logaritmo del peso de cada órgano y el logaritmo del peso total del animal (modelo

potencial). La transformación de las variables dependientes surgió de la fuerte evidencia de falta de

homocedasticidad, y la de la variable independiente por el mal ajuste del modelo sin transformar. Ambos

defectos e detectaron mediante el estudio de los residuales (no se pudieron realizar pruebas estadísticas sobre

los supuestos por falta de réplicas).

En el bazo y el órgano epigonal se obtuvieron las ecuaciones para machos y hembras por seperado.

Cuando los modelos resultaron estadisticamente coincidentes (la comparación se hizo por medio de un análisis

de la covarianza, SOKAL & ROLHF, 1981) se consideró una sola ecuaciön conjunta.

Para evaluar la importancia relativa de cada órgano, en la forma usual que se presenta en la bibliografia,

se calcularon los porcentajes en peso respecto del total (BZ/PT x 100; EPI/PT x 100 y LEY/PT x 100). Estas

variables se processaron a través de métodos clásicos de estadistica descriptiva: histogramas y estimaciones

(tab I) de parämetros de centralizaciön (media aritmética) y dispersión (desvio estándar) (SOKAL & ROLHF,

1981). Para el bazo y el órgano epigonal se compararon las medias de ambos sexos a través de un análisis de la

covarianza. Como covariable se unó el peso total ya que no pudo controlarse debido al carácter aleatorio del

muestreo. Finalmente se compararon, no estadisticamente, los valores medios de las proporciones en peso de

cada uno de los estudiados, con los registrados en la bibliografia.

Todo el material analizado se encuentra en el Laboratorio de Histología Animal de la Universidad

Nacional del Sur, Bahia Blanca, Argentina.

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Relación ente el peso del bazo y el peso total. Se estudiaron 79 bazos, 46 de ma-

chos y 33 de hembras (tab. II); figs. 1, 2). Las rectas de regresión son coincidentes (fig.

3), ya que no se hallaron diferencias entre sus pendientes (p = 0,20), ni entre sus ordena-

das al origen ( p = 0,23).

Porporción en peso del bazo (BZ/PT x 100). El primer enfoque se hizo a través de

métodos descriptivos y determinación de parámetros de centralización y dispersión (fig.

4). En el análisis de covarianza (tab. III) para estabelecer la existencia de dimorfismo

sexual no se hallaron diferencias significativas (p = 0,16).

Relación entre el peso del órgano epigonal y el peso total. Se trabajó con 59

animales, 36 machos y 23 hembras (figs. 5 y 6). Los resultados del análises de covarianza

(tab. IV) indican que si bien ambas rectas son paralelas (p = 0,27); (fig. 7) sus ordenadas

al origen son distintas (p << 0,01).

Proporción en peso del órgano epigonal (EPI/PT x 100). La distribución de la

variable en ambos sexos indica (fig. 8) y el análisis de covarianza para comparar las

medias (tab. V) confirma la existencia de diferencias altamente significativas en el

porcentaje en peso del órgano epigonal (p << 0,01), siendo la proporción mayor en los

machos.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142,18 jun. 1996

Análisis morfometrica del complejo linfomieloide ... 19%

hembras

0.1 0.1

1000 100 1000

1 peso total peso total

10 0.4

BRR SE ia on lo wına cet timachos

3 „©

(2) [ lhembras

= 0.3

(o) tem

q 1 So02

«fa E

(2)

00.1

0.987 q

BZ = 0.0019 x PT

0.1 === 0

100 peso total 1000 0.1 0.15% 02% 025% 03% 0.35%

% en peso del bazo

Figs. 1-4. Bazo de Mustelus schmitti. Ajustes obtenidos para machos (1), hembras (2) y en conjunto (3); 1-3,

escala logaritmica; 4, distribuciön de la proporciön en peso para ambos sexos.

Tabla I. Parämetros de centralizaciön y dispersión de la porporciön en peso de los órganos hemopoyéticos de

Mustelus schmitti. (BZ, bazo; EPI, örgano epigonal; LEY, örgano de Leydig; PT, peso total; 100, porcentaje).

X o) S 6) x ei S & X Total S Total

BZ/PTx100 0,194 0,061 0,176 0,052 0,185 0,056

EPI/PTx 100 0,401 0,099 0327 0,108 0,364 0,104

LEY/PTx100 - - - - 0,021 0,009

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142, 18 jun. 1996

138

GALINDEZ & AGGIO

Tabla II. Análisis de covarianza para la comparación de rectas para el bazo de Mustelus schmitti. (SC: suma de

cuadrados, GL: grados de libertad, CM: cuadrado medio, F: estadistico, **: altamente significativo).

Variación Sc GL

Igualdad de medias ajustadas 0,1534 |

Pendiente = O 25,3365 l

Error | 8,0668 76

Igualdad de pendientes Daio l

Error 2 7,8895 o

CM F

0,1534 1,445 p=0,23

23.3365 238,7%%

0,1061

0,1773 0,686 p=0,20

0,1052

Tabla III. Análisis de covarianza para la comparaciön de medias para el bazo de Mustelus schmitti.

Variación

Igualdad de medias ajustadas

Pendiente = O

Error 1

Igualdad de pendientes

Error 2

0,0068

0,0013

0,2542

0,0054

0,2488

0,0068

0,0013

0,0033

0,0054

0,0033

2,021 p= 0,16

0,378 p= 0,54

1,625 p= 0,21

Tabla IV. Análisis de covarianza para la comparaciön de rectas para el Organo Epigonal de Mustelus schmitti.

(**, altamente significativo).

Variación

Igualdad de medias ajustadas

Pendiente = O

Error 1

Igualdad de pendientes

Error 2

SC GL CM

0,7315 l 07215

18,0353 l 18,0353

4,8168 56 0,0860

0,1067 1 0,1067

4,7101 55 0,0856

8,5%%

AL qe

1,246 p= 0,27

Tabla V. Análisis de covarianza para la comparación de medias para el Organo Epigonal de Mustelus schmitti.

(**, altamente significativo).

Variación

Igualdad de medias ajustadas

Pendiente = 0

Error 1

Igualdade de Pendientes

Error 2

0,0765

0,0054

0,5943

0,0231

0,5711

GL CM F

l 0,0765 als

l 0,0054 0,509 p= 0,48

56 0,0106

l 0,0231 2,228 p= 0,14

55 0,0104

Tabla VI. Análisis de varianza para la regresión para el Organo de Leydig de Mustelus schmitti. (**, altamente

significativo).

Variación

Regresión

Residual

Total

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142,18 jun. 1996

7,58466

8,20440

15,78906

7,58446

0,19534

Eletro a

Análisis morfometrica del complejo linfomieloide ... 139

1.5 1.5

q q

= E

oO (o)

=) je)

a a

[eb] ®

machos

0.15 0.15

100 1000 100 1000

peso total peso total

0.5

Fimachos |

8 [_hembras'

0.4

“= 0.3

(eb)

Ee)

1002

[$)

1.044 Sr

machos: EPI= 0.003 x PT ©

1.04 | q =

hembras:EPI= 0.0024xPT E

“100 1000 01% 02% 03% 04% 05% 06

peso total % en peso Org. epigonal

Figs. 5-8. Órgano epigonal de Mustelus schmitti. (Ajustes obtenidos para) 5, machos; 6, hembras; 7, en conjun-

to; 5-7, escala logaritmica; 8, distribución de la proporción en peso para ambos sexos.

Relación entre el peso del órgano de Leydig y el peso total. Debido a dificultades

de muestreo se dispuso solamente de 44 animales. La alta dispersión que se observa en

los datos se debe, presumiblemente, a las dificultades técnicas que entrafia su disección

y por ello los resultados se expresan en forma global. La regresión es altamente signifi-

cativa (p << 0,01) (figs. 9 y 10; tab. VI), en este caso se aprecia que la pendiente es,

aparentemente, inferior a 1.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142, 18 jun. 1996

140 GALINDEZ & AGGIO

O 200 400 600 800 1000

peso total

0.789

" LEY = 0.00066 X PT E

100 peso total 1000

proporción de frecuencia

o © o

de oe a Sb A E schm RL en ustes obtenidos n los datos sin

nsformaciön; 10, c nsforma PAU RA ste GR cala logaritmic E dis % an nie la proporciön

iR a nie

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142,18 jun. 1996

Análisis morfometrica del complejo linfomieloide ... 141

Tabla VII. Proporción en peso de los órganos hemopoyéticos de Mustelus schmitti y otras especies (datos de

FÄNGE, 1977, 1982). (NP, no posee).

Espécies Leydig Epigonal Bazo %Total

Prionace glauca NP 0,49 0,26 0,75

Ginglymostama cirratum NP 0,61 029 0,90

Heterodontus francisci NP 1,40 0,65 2,05

Negaprion brevirostris NP 1530 0,80 230

Squalus acanthias 0,09 0,19 0,63 0,91

Scyliorhinus canicula 0,11 0,39 0,46 0,96

Squatina squatina 0,16 NP 0,33 0,49

Etmopterus spinax 0,48 NP 0,22 0,70

Somniosus microcephalus 0,50 NP 0,42 0,92

Mustelus schmitti 0,02 0,37 0,18 0,57

especies de selacios

1.5 1 0.5 (0) 0.5 1 1.5

Peso Organo/PT x 100

N Leydig [4 Epigonal | |Bazo

* Valores obtenidos de FANGE, 1982

Fig. 12. Porcentaje en peso de los diferentes parénquimas hemopoyéticos. a, Mustelus schmitti, b, Prionace

galuca, c, Gynglimostoma cirratum, d, Heterodontus francisci, e, Negaprion brevirostris, f,Spqualus acanthias,

g, Scyliorhinus canicula, h, Squatina squatina, 1, Etmopterus spinax y j, Somniosus microcephalus.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142, 18 jun. 1996

142 GALINDEZ & AGGIO

Proporción en peso del órgano de Leydig (LEY/PT x 100). Sólo se emplearon los

métodos descriptivos cläsıcos que evidencian la alta dispersiön de la variable (fig. 11).

El comportamiento del bazo y el órgano epigonal es similar aunque este último

muestra diferencias sexuales. Llama la atención que en ambos casos la pendiente de la

recta de regresión es cercana a uno (aunque la hipótesis no se comprobó estadisticamente).

Esto sugiere que las funciones eritropoyética y granulopoyética se incrementan en for-

ma concordante con el aumento del peso (y por lo tanto con el “crecimiento”) e indica

que ambos órganos son los máximos responsables de la hemopoyesis a medida que el

animal crece.

Los resultados obtenidos para M. scmitti muestran la independencia del sexo de la

eritropoyesis. Con respecto a la granulopoyesis, no se han hallado razones que justifiquen

la diferencia de tamafio.

Proporciön en peso de diferentes órganos linfomieloides en 10 especies de selacios.

Se efectuó la comparación entre los resultados aqui presentados y los de otras 9 especies

de selacios (tab. VII; fig. 12) disponibles en la bibliografia (FÄNGE, 1977; 1982). Los

resultados muestran la separación de dos grandes grupos, uno de animales cuyo complejo

linfomieloide supera el 2% del peso total (especies d y e de la fig. 12), y otro con valores

cercanos al 1%. Este último incluye tres variantes según la presencia conjunta ó no de

alguno de los dos parénquimas granulopoyéticos además del bazo. M. schmiti posee un

órgano de Leydig muy pequefio y presenta una inversión, respecto de las otras especies,

en la proporción en peso del bazo y el órgano epigonal. Esto hace que se vea agrupado

con especies de hábitos dispares y alejado de otras con nicho más afın y más cercanas

filogenéticamente como Scyliorhinus canicula Linné, 1758 (NELSON, 1976).

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

FANGE, R. 1977. Size relation of lymphomyeloid tissue in fishes. Acta Zool., Stockolm, 58:125-128.

— . 1982. A comparative study of Iymphoid tissue in fishes. Dev. Comp. Immunol., New York, Suppl. 2:23-

33:

—. 1987. Lymphomyeloid system and blood cells morphology in elasmobranchs. Archs. Biol., Bruxelles,

98:187-208.

FÄNGE, R. & JOHANSSON-SJÓBECK, M. L. 1975. The effect of the splenectomy on the haematology and

on the activity of the 6-aminolevulinic acid dehydratase (ALA-D) in the hemopoietic tissues of the dogfish

Scyliorhinus canicula. (Elasmobranchii). Comp. Biochem. Physiol. (A), New York, 52:577-580.

FÄNGE, R. & NILSSON, S. 1985. The fish spleen: Structure and function. Experientia, Basel, 41:152-158.

NELSON, J. S. 1976. Fishes of the world. New York, Willey-Interscience, 416 p.

OPDYKE, D. F & OPDYKE, N. E. 1971. Splenic responses to stimulation in Squalus acanthias. Am. J.

Physiol., New York, 221: 623-625.

SOKAL, R.R. & ROHLF, F.J. 1981. Biometry, 2. ed. New York, Freeman, 859 p.

Recebido em 30.08.1994: aceito em 05.09.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80): 135-142,18 jun. 1996

143

O periódico IHERINGIA, SÉRIE ZOOLOGIA, editado pelo Museu de Ciências Naturais da Fundação Zoobotânica

do Rio Grande do Sul, destina-se a publicar trabalhos originais em Zoologia. E distribuído a Instituições congêneres em regime

de permuta.

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1. Os manuscritos devem ser encaminhados com exclusividade ao Editor, em três vias, em forma definitiva,

datilografados em papel ofício, em espaço duplo redigidos preferencialmente em português, inglês, espanhol ou francês. A

correção gramatical é de inteira responsabilidade do(s) autor(es).

2. Os manuscritos, sempre que possível, devem compreender os seguintes tópicos: Título; Nome(s) do(s) Autor(es);

Abstract (em inglês, inclusive o título do trabalho); Keywords (no máximo cinco); Introdução; Material e Métodos; Resultados

e/ou Discussão; Conclusões; Agradecimentos e Referências Bibliográficas. A exceção do(s) nome(s) do (s) Autor(es) e

Agradecimentos, todos os demais elementos acima devem ser escritos em CAIXA ALTA.

3. Não usar notas de rodapé, exceto a da primeira página que deve conter o endereço completo do(s) autor(es).

4. Os nomes genéricos e específicos, ao serem citados pela primeira vez no texto, devem estar acompanhados do nome

do autor e ano da publicação.

5. Citar a instituição depositária dos espécimens que fundamentaram a pesquisa.

6. As referências citadas no texto devem ser feitas no seguinte modo: FONSECA (1987), (FONSECA, 1987),

FONSECA (1987:54) ou (FONSECA, 1987:54). Trabalhos não publicados devem ser evitados. As referências bibliográficas

devem estar dispostas em ordem alfabética e cronológica, segundo as normas da ABNT, salvo o ano da publicação que deve

seguir o nome do autor. As abreviaturas dos nomes de periódicos devem obedecer as normas do "World List of Scientific

Periodicals". Exemplos:

SANTOS, E. 1952. Da ema ao beija-flor. 2. ed. rev. ampl. Rio de Janeiro, F. Briguiet. 335p.

BERTSCHINGER, R. B. E. & THOMÉ, J. W. 1987. Contribuição à recaracterização de Phyllocaulis soleiformis (Orbigny,

1835) (Gastropoda, Veronicelidae). Revta bras. Zool., São Paulo, 4 (3): 215-233.

7. As ilustrações devem ser feitas preferencialmente a traço, com nanquim, em papel vegetal acompanhadas de escalas.

As ilustrações (desenhos, fotografias, gráficos e mapas) devem ser tratadas como figuras e numeradas com algarismos arábicos

sequenciais; devem ser montadas em cartolina branca, proporcionais às dimensões (12 em x 17 cm) não ultrapassando o dobro,

adotado o critério de rigorosa economia de espaço. A Comissão Editorial reserva-se o direito de efetuar alterações na montagem

das pranchas ou solicitar nova montagem aos autores. As legendas devem ser datilografadas em folha(s) a parte. Ilustrações

a cores devem ser combinadas previamente e seu custo fica a cargo do (s) autor (es). As tabelas devem permitir uma redução

para um máximo de 12 cm x 17 cm; devem ser numeradas com algarismos romanos e apresentar título conciso e claras

explicações que permitam sua compreensão sem consultas ao texto. As figuras não devem ser incluídas no meio do texto e

devem ser identificadas no verso. Figuras e tabelas devem restringir-se ao estritamente necessário.

8. A elaboração da listagem do material examinado deve dispor as localidades do Norte para o Sul e de Leste para Oeste

e as siglas das instituições compostas de 4 letras segundo o modelo abaixo:

Ex.: VENEZUELA. Sucre: San Antonio del Golfe, 5 ?, 08.V.1942, S. Karpinski col., (MNHN, 2547). PARANÁ.

Chiriqui: Bugaba (Volcan de Chiriqui), 36, 39,24.V1.1901, Champion col. (BMNH, 1901). BRASIL. Goiás: Jataí, (Fazenda

Aceiro), 3 O, 15.X1.1915, C. Bueno Col. (MZSP, 4312); Paraná: Curitiba, 19, 10.X11.1925, F. Silveira col. (MNRJ); Rio

Grande do Sul: Viamão, 5C', 17.X1.1943, S. Carvalho col. (MCNZ, 2147).

9. A seleção dos manuscritos far-se-á pela Comissão Redatorial após parecer de no mínimo dois referees. Alterações

de pequena monta serão feitas pela própria Comissão. Alterações mais substanciais serão solicitadas aos autores, mediante a

devolução dos originais, acompanhados das sugestões. As provas tipográficas não serão enviadas ao (s) autor(es), exceto em

casos excepcionais.

10. Enviar cópia em disquete junto com a versão final do manuscrito.

11. Para cada artigo será fornecido, gratuitamente, um número fixo de 50 separatas, sem capa.

Maria Helena M. Galileo

Editora

COMISSÃO REDATORIAL

Erica H. Buckup (presidente)

Maria Aparecida de L. Marques

Maria H. M. Galileo

Maria Lúcia M. Alves ENDEREÇO PARA PERMUTA

(Address for exchange)

Biblioteca Museu de Ciências Naturais

Fundação Zoobotânica do RS

Caixa Postal 1188

90001-970 Porto Alegre, RS

Brasil

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (80):1- 144, 18 jun. 1996

144

CONSULTORES CIENTIFICOS DA IHERINGIA, SERIE ZOOLOGIA

Adalto Bianchini, Depto. de Ciências Fisiológicas, FURG, Rio Grande, RS; Ana Maria de Souza Oliveira, Instituto de

Biociências, USP, São Paulo, SP; Ana Maria Setúbal Vanin, Instituto Oceanográfico, USP, São Paulo, SP; Ângelo B.M.

Machado, Depto. de Zoologia, UFMG, Belo Horizonte, MG; Anthony B. Rylands, Depto. de Zoologia, UFMG, Belo Horizonte,

MG; Antônio Domingos Brescovit, Instituto Butantan, São Paulo, SP; Arno A. Lise, Instituto de Biociências, PUC-RS, Porto

Alegre, RS; Alfredo Langguth, Depto. de Sist. e Ecol., UFPB, João Pessoa; Arnaldo C. dos S. Coelho, Museu Nacional, Rio

de Janeiro, RJ; Carlos Emílio Benvenuti, Depto. de Biologia-Bentos, FURG, Rio Grande, RS; Carlos H.W. Flechtmann,

Depto. de Biologia, ESALQ, Piracicaba, SP; Carlos Ribeiro Vilela, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Carlos

Roberto Brandão, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; Carminda da Cruz Landim, Instituto de Biociências, UNESP, Rio

Claro, SP; Cleide Costa, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; Clóvis B. Castro, Museu Nacional, Rio de Janeiro, RJ;

Célio F.B. Haddad, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP; Cesar Ades, Instituto de Psicologia, USP, São Paulo, SP;

Dalton de Souza Amorim, FFCLRP, USP, Ribeirão Preto, SP; Dante Martins Teixeira, Museu Nacional, Rio de Janeiro, RJ;

Dieter Wittmann, Instituto de Biociências, PUC-RS, Porto Alegre, RS; Dilma Solange Napp, Depto. de Zoologia, UFPR,

Curitiba, PR; Edmundo Ferraz Nonato, Instituto Oceanográfico, USP, São Paulo, SP; Eduardo Cunha Farias, Instituto de

Ciências Biomédicas, USP, São Paulo, SP; Edwin O'Neill Willis, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP; Eleonora

Trajano, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Elizabeth Höfling, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP;

Emílio A. Maury, Museo de C. Nat. “Bernardino Rivadavia”, Buenos Aires, Argentina; Erika Schlenz, Instituto de Biociências,

USP, São Paulo, SP; Francisco M. de Souza Braga, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro,SP; Germán A.B. Mahecha,

Inst. de Ciências Biológicas, UFMG, Belo Horizonte, MG; Gilberto Righi, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP;

Gustavo A. Schmidt de Melo, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; Heraldo A. Britski, Museu de Zoologia, USP, São

Paulo, SP; Hilda de Souza Lima Mesquita, Instituto Oceanográfico, USP, São Paulo, SP; Jacques M.E. Vielliard, Depto. de

Zoologia, UNICAMP, Campinas, SP; Jaime Loyola e Silva, Depto. de Zoologia, UFPR, Curitiba, PR; Janira Martins Costa,

Museu Nacional, Rio de Janeiro, RJ; João M.F. Camargo, FFCLRP, USP, Ribeirão Preto, SP; João Oldair Menegheti, Instituto

de Biociências, UFRGS, Porto Alegre, RS; Jocélia Grazia, Instituto de Biociências, UFRGS, Porto Alegre, RS; Jorge Jim,

Instituto de Biociências, UNESP, Botucatu, SP; José Albertino Rafael, Coordenação de Pesq. em Entomologia, INPA, Manaus,

AM; José Henrique Guimarães, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; José Lima de Figueiredo, Museu de Zoologia, USP,

São Paulo, SP; José Luiz M. Leme, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; José W. Thomé, Instituto de Biociências, PUC-

RS, Porto Alegre, RS; Julio Cesar Garavello, Depto. de Ciências Biológicas, UFSCar, São Carlos, SP; Liliana Forneris,

Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Luiz Carlos Alvarenga, Museu Nacional, Rio de Janeiro, RJ; Luiz Carlos B.

Ferraz, ESALQ, Piracicaba, SP; Luiz Octávio M. Machado, Depto. de Zoologia, UNICAMP, Campinas, SP; Luiz D. Vizotto,

Instituto de Biociências, UNESP, São José do Rio Preto, SP; Luiz Roberto Tommasi, Instituto Oceanográfico, USP, São

Paulo, SP; Maria Cristina Pinedo, Depto. de Oceanografia, FURG, Rio Grande, RS; Maria Elena Galiano, Museu de C. Nat.

“B. Rivadavia”, Buenos Aires, Argentina; Maria Júlia da Costa Belém, Museu Nacional, Rio de Janeiro, RJ; Martin L.

Christoffersen, Depto. de Sist. e Ecol., UFPB, João Pessoa, PB; Massuka Yamane Narahara, Instituto de Pesca, São Paulo, SP;

Matilde Achaval Elena, Instituto de Biociências, UFRGS, Porto Alegre, RS; Miriam Becker, Instituto de Biociências, UFRGS,

Porto Alegre, RS; Miriam David Marques, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; Miguel A. Monné, Museu Nacional, Rio

de Janeiro, RJ; Miguel T. U. Rodrigues, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Miguel Petrere Júnior, Instituto de

Biociências, UNESP, Rio Claro, SP; Naércio Menezes, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; Nélson Fontoura, Instituto

de Biociências, PUC-RS, Porto Alegre, RS; Nilton José Hebling, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP; Nélson

Papavero, Instituto de Estudos Avançados, USP, São Paulo, SP; Olaf Mielke, Depto. de Zoologia, UFPR, Curitiba, PR; Osmar

Domaneschi, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Osmar Malaspina, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro,

SP; Oswaldo L. Peixoto, Instituto de Biologia, UFRRJ, Seropédica, RJ; Pablo Penchaszadeh, Universidad Simón Bolívar,

Caracas, Venezuela; Paulo da Cunha Lana, Centro de Biologia Marinha, UFPR, Paranaguá, PR; Pedro Marcos Linardi,

Instituto de Ciências Biológicas, UFMG, B. Horizonte, MG; Reimar Schaden, CNPg, Brasília, DF; Renato C. Marinoni,

Depto. de Zoologia, UFPR, Curitiba, PR; Roberto B. Cavalcanti, Depto. de Zoologia, UnB, Brasília, DF; Roberto E. dos Reis,

Museu de Ciências, PUC-RS, Porto Alegre, RS; Roberto Sassi, Núcleo de Pesquisas de Recursos do Mar, UFPB, João Pessoa,

PB; Rubens A. da Cunha, Depto. de Matemática e Estatística, UNESP, Rio Claro, SP; Sérgio de Almeida Rodrigues, Instituto

de Biociências, USP, São Paulo, SP; Sérgio A. Vanin, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Sérgio Rosso, Instituto de

Biociências, Universidade de São Paulo, São Paulo, SP; Sônia Maria L. Garcia, Instituto de Biociências, UFRGS, Porto

Alegre, RS; Suzana B. Amato, Instituto de Biologia, UFRRJ, Seropédica, RJ; Sylvia M. Lucas, Instituto Butantan, São Paulo,

SP; Ubirajara R. Martins de Souza, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP; Valdir A. Taddei, Instituto de Biociências,

UNESP, São José do Rio Preto, SP; Vera Lucia Imperatriz-Fonseca, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Vera Maria

Ferreira da Silva, Lab. de Mamíferos Aquáticos, INPA, Manaus, AM; Vinalto Graf, Depto. de Zoologia, UFPR, Curitiba, PR;

Victor Py-Daniel, Coordenação de Pesquisas em Entomologia, INPA, Manaus, AM; Walter A. Boeger, Depto. de Zoologia,

UFPR, Curitiba, PR; Walter Narchi, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP; Walter R. Terra, Instituto de Química, USP,

São Paulo, SP; Woodruf W. Benson, Departamento de Zoologia, UNICAMP, Campinas, SP.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (80):1 - 144, 18 jun. 1996

CONSULTORES DA IHERINGIA, SER. ZOOL., nº 80

e Ana Maria Setúbal Vanin, Instituto Oceanogräfico, USP, São Paulo, SP

* Antônio Domingos Brescovit, Instituto Butantan, São Paulo, SP

* Arno A. Lise, Instituto de Biociências, PUC-RS, Porto Alegre, RS

* Carlos Emílio Benvenuti, Depto. de Biologia-Bentos, FURG, Rio Grande, RS

e Carlos Ribeiro Vilela, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP

e Carminda da Cruz Landim, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP

* Cleide Costa, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP

e Dante Martins Teixeira, Museu Nacional, Rio de Janeiro, RJ

* Dilma Solange Napp, Depto. de Zoologia, UFPR, Curitiba, PR

* Elizabeth Höfling, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP

e Erika Schlenz, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP

* Gustavo A. Schmidt de Melo, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP

* Jacques M.E. Vielliard, Depto. de Zoologia, UNICAMP, Campinas, SP

e Luiz D. Vizotto, Instituto de Biociências, UNESP, São José do Rio Preto, SP

* Miguel Petrere Júnior, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP

* Miriam Becker, Instituto de Biociências, UFRGS, Porto Alegre, RS

* Miriam David Marques, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP

* Naércio Menezes, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP

* Nilton José Hebling, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP

* Paulo da Cunha Lana, Centro de Biologia Marinha, UFPR, Paranaguá, PR

* Roberto E. dos Reis, Museu de Ciências, PUC-RS, Porto Alegre, RS

* Rubens A. da Cunha, Depto. de Matemática e Estatística, UNESP, Rio Claro, SP

* Sérgio A. Vanin, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP

* Werner Bokermann, in memorian, Fundação Parque Zoológico, São Paulo, SP

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LANZER-DE-SOUZA, M. E. Nova espécie brasileira do gênero Belostoma (Heteroptera, Belostomatidae) ...............

ESTECONDO, S; CODÓN, S. M. & CASANAVE, E. B. Histological study of the disgestive tract of Dasypus hybridus

E o Ba SO pai A) ERREI PERDE O PD RENA DEP RR DEDE DA ROD VR EEE EEERERBERRERR

AQUINO, A. E. Redescripción de Otocinclus flexilis Cope, 1894 (Siluriformes, Loricariidae, Hypoptopomatinae) con un

ee o PRE dE e REDE AEE RSA URI POSSO MRE

GALIANO, M. E. Descripción de tres nuevas especies de Lyssomanes de Brasil (Araneae, Salticidae) ..........ssseeses

VOLKMER-RIBEIRO, C. Acanthodiscus new genus and genus Anheteromeyenia redefined (Porifera, Spongillidae),

BUCKUP, E. H. & MARQUES, M. A. L. Descrições, transferências e novas sinonímias em Theridiidae (Araneae) ...

DREHMER, C. J. & FERIGOLO, J. Descrição do sincränio de Arctocephalus australis (Pinnipedia, Otariidae) ........

CRUZ-LANDIM, C., da. Ultrastructure of the haemocytes associated with the dorsal tegument of Apis dorsata

DR baia ERES ee ER AN q

CICCHINO, A. C. & CASTRO, D. del C. Revalidation of Phrheiropoios gracilipes (Amblycera, Gyropidae), with

remarks on its synoxenism and distribution in Ctenomys species from Argentina (Rodentia, Ctenomyidae) ..........

MIKICH, S. B. Análise quali-quantitativa do comportamento de Penelope superciliaris (Aves, Cracidae) „un

BARBIERI, G.; HARTZ, S. M. & VERANI,J. R. O fator de condição e índice hepatossomätico como indicadores do

período de desova de Astyanax fasciatus da represa do Lobo, São Paulo (Osteichthyes, Characidae) .......0...

CUNHA, R. A. da. Relacionamento de métodos de agrupamento por correlação de matrizes de valores cofenéticos ..

CORRONCA, J. A. Dos nuevas especies sudamericanas de Selenops (Araneae, Selenopidae) ...ussmeneneemnenennennen

ARAUJO, P. B. de; BUCKUP, L. & BOND-BUCKUP, G. Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) de Santa Catarina

erh ARNO E ARE Se de were

ANKEN, R. H. On the taxonomic value of the morphology of wing scales in some Heliconiinae (Lepidoptera,

CO Eron io SAAE ERRADA SO DERA DARE PRN RENNER NO 6290 EA REV EEGENEREF ESP AREREUR

MIRALLES, D. B. de & VILLALOBOS, €. de. Especies de Neochordodes de la Argentina (Gordiacea, Nematomorpha),

SERRÃO, J. E. & CRUZ-LANDIM, C. da. Ultrastructure of midgut endocrine cells in workers of stingless bee

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Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul

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-) MUSEU DE CIÊNCIAS NATURAIS

| órgão da

FUNDAÇÃO ZOOBOTÂNICA DO RIO GRANDE DO SUL

CGC 87.912.929/0001-75 - Supervisionada pela Secretaria da Agricultura e Abastecimento

Editor responsável: Maria Helena Mainieri Galileo

Comissão redatorial: Erica H. Buckup (Presidente), Inga L. Veitenheimer Mendes,

Maria Aparecida de L. Marques, Maria Lúcia Machado Alves, Maria Helena M.

Galileo.

Colaborador: Luciano de Azevedo Moura

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Iheringia

Série Zoologia

A revista IHERINGIA, Ser. Zool., é editada pelo Museu de Ciências Naturais,

órgão da Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, entidade de direito privado,

instituída pela Lei Estadual nº 6.497, de 20.12.72, supervisionada pela Secretaria de

Estado da Agricultura e destina-se à divulgação de trabalhos científicos originais,

inéditos, resultantes de pesquisa em Zoologia.

Este número foi editado e impresso na gráfica Pallotti em outubro de 1996.

Tiragem 500 exemplares.

Endereço: Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Cx. Postal 1188,

CEP 90001-970 Porto Alegre, RS, BRASIL. Tel. (051) 336.1511; Fax (051)

336.1778.

Os artigos assinados são de responsabilidade dos autores. É permitida a

reprodução total ou parcial dos artigos da Revista, desde que seja citada a fonte.

Iheringia, Sér. Zoologia. v. 1, 1957 -

Porto Alegre, RS - Brasil, Museu de Ciências Naturais

Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul

1957 -

Semestral

ISSN 0073-4721

1. Zoologia-Periódicos - Brasil.

2. Trabalhos científicos - Zoologia - Brasil. I. Museu de

Ciências Naturais, Fundação Zoobotância do Rio Grande

do Sul

CDU - 59 (05)

Artigos publicados na Iheringia Ser. Zoologia são indexados por: Abstracts of

Entomology, Apicultural Abstracts, Bioresearch Index, Biological Abstracts, Centre

Interrational de Documentation Arachnologique, Entomological Abstracts, The

Zoological Record.

hz ' Programa de Apoio a Publicações Científicas

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NOVA ESPÉCIE BRASILEIRA DO GÉNERO BELOSTOMA

(HETEROPTERA, BELOSTOMATIDAE)

Maria Elizabeth Lanzer-de-Souza!

ABSTRACT

A NEW BRAZILIAN SPECIES OF THE GENUS BELOSTOMA (HETEROPTERA,

BELOSTOMATIDAE). Belostoma cachoeirinhensis,sp.n., from Cachoeirinha, State of Rio Grande do Sul,

Brazil, is described and included in the subspinosum group.

KEYWORDS. Heteroptera, Belostomatidae, Belostoma, Neotropical, new species.

INTRODUÇÃO

O espécime examinado, proveniente de coleta realizada com armadilha luminosa,

modelo "Luiz de Queiróz", instalada no campo de experimentos da Estação Experimen-

tal do Arroz (EFA), do Instituto Rio Grandense do Arroz (IRGA), em Cachoeirinha, Rio

Grande do Sul, permitiu estabelecer um novo táxon de Belostoma Latreille, 1807, que se

inclui no grupo subspinosum proposto por LAUCK (1962). Este grupo reúne, até o

momento, as espécies norte-americanas B. subspinosum cupreomicans (Stál, 1854), B.

subspinosum subspinosum (Palisot de Beauvois, 1920), e as sul-americanas B. ellipticum

Latreille, 1833, B. anurum (Herrich-Schaffer, 1848), B. asiaticum (Mayr, 1863), B.

elongatum Montandon, 1908, B. cummingsi De Carlo, 1930, B. dallasi De Carlo, 1930,

B. columbiae Lauck, 1962, B. guianae Lauck, 1962; incluindo-se também, pelas

diagnoses, B. bordoni De Carlo, 1966, B. doesburgi De Carlo, 1966 (DE CARLO, 1966)

e B. pseudoguianae Roback & Nieser, 1974 (ROBACK & NIESER, 1974), descritas

posteriormente.

O holötipo está depositado no Museu de Ciências Naturais (MCN) da Fundação

Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre.

1. Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Caixa Postal 1188, 90001-970 Porto Alegre, RS, Brasil.

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4 LANZER-DE-SOUZA

Belostoma cachoeirinhensis, sp. n.

(Figs. 1-7)

S (Holótipo). Coloração geral castanho-clara. Olhos pretos. Região anterior do

pronoto com manchas esparsas castanho-escuras e duas faixas marginais estreitas, ama-

reladas. Escutelo castanho-escuro; na região anterior uma larga faixa central quase pre-

ta. Vértice posterior do escutelo com uma discreta mancha amarela em forma de V.

Cório com pêlos dourados, formando uma mancha amarela próxima ao ângulo formado

entre a sutura da membrana e a do clavo. Abdômen castanho-amarelado, os três últimos

esternitos com manchas marginais, formando uma faixa castanho-escura em cada lado,

próximo da borda.

Anteóculos menor que o interóculos. Espaço interocular sem carena, bem elevado

em relação à margem dos olhos, de comprimento e largura iguais. Clípeo não atinge a

linha ocular (fig. 1). Rostro com o 1º e 2º segmentos de comprimento quase igual (fig.

2). Olhos com margem externa arredondada, subglobosos (fig. 1). Região anterior do

pronoto com as bordas bem dilatadas; comprimento, na linha média, cerca da metade da

largura correspondente à borda posterior; sem carena mediana. Fossetas do pronoto bem

marcadas. Carena prosternal elevada e parcialmente truncada (fig. 3). Escutelo com a

região posterior nitidamente mais elevada que a anterior; sem carena mediana; alcançan-

do a linha nodal. Clavo sem nervuras visíveis. Cório com rede de nervuras bem marcada.

Pilosidade abdominal densa, revestindo somente a metade do conexivo, encobrindo os

espiráculos e estendendo-se ao redor do opérculo genital (fig. 4). Armadura genital (figs.

5-7).

Medidas em mm. Comprimento total 33,1; largura 14,4. Largura do olho 2,0. Com-

primento interocular 2,7; largura interocular 2,7; comprimento anteocular 2,2. Distân-

cia do clípeo à linha ocular 0,2. Segmentos do rostro, 1º: 2,8; 2º: 2,5.Pronoto: compri-

mento na linha média 5,5; largura 10,2. Escutelo: largura 7,0; comprimento na linha

média 6,0.

Etimologia: O nome específico refere-se à localidade-tipo.

Material-tipo. BRASIL.Rio Grande do Sul: Cachoeirinha, Estação Experimental

do Arroz (EEA/IRGA). Holótipo 5, 20.X1.1980, M. E. L. de Souza col. (MCN 136.643).

Diagnose. B. cachoeirinhensis, sp.n. agrupa-se às espécies sul-americanas do gru-

po subspinosum junto com B. cummingsi (comprimento 34,5-38 mm, largura 14,8-16

mm) e, como esta, diferindo de todas as demais do grupo por possuir pilosidade abdomi-

nal estendendo-se ao redor do opérculo genital. Diferencia-se de B. cummingsi pela for-

ma menos elíptica do corpo, na quase inexistente diferença entre o tamanho do 1º e 2º

segmentos do rostro, pelo clípeo afastado da linha ocular, pelo interóculos de compri-

mento igual à sua largura, pela forma da carena prosternal e, significativamente, pela

armadura genital do macho (fig. 5-7), comparando-a com os esboços figurados por

LAUCK (1962:60, fig. 38) e SCHNACK (1976:58, fig. 23).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 3-6, 04 out. 1996

Nova espécie brasileira do gênero Belostoma... 5

AME

Figs.1-7.Belostoma cachoeirinhensis, sp. n. holötipo 9. 1, cabeça em vista dorsal, linha ocular e olhos; 2,

segmentos do rostro, vista lateral; 3, carena prosternal, vista lateral; 4, pilosidade abdominal dorsal; genitália:

5, vista lateral; 6, metade dorsal; 7, metade ventral. Figs. 5 e 7 na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 3-6, 04 out. 1996

LANZER-DE-SOUZA

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

DE CARLO, J. A. 1966. Un genero, nuevas especies y referencias de otras poco conocidas de la familia

Belostomatidae (Hemiptera). Revta Soc. ent. argent. Buenos Aires, 28(1/4):97-109.

LAUCK, D.R. 1962. A monograph of the genus Belostoma (Hemiptera) Part I. Introduction and B. dentatum

and subpinosum groups. Bull Chicago Acad. Sci., Chicago, 11(3):34-81.

ROBACK, S.S. & NIESER, N. 1974. Aquatic Hemiptera (Heteroptera) from the Ilanos of Colombia. Proc.

Acad. nat. Sci. Philad., Philadelphia, 126(4):38-40. R a

SCHNACK, J.A. 1976. Insecta Hemiptera Belostomatidae. In: FUNDACION PARA LA EDUCACION, LA

CIENCIA Y LA CULTURA. Fauna de agua dulce de la República Argentina. Buenos Aires, FECIC.

Fasc. 1, p.1-66.

Recebido em 10.04.1995; aceito em 5.09.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 3-6, 04 out. 1996

HISTOLOGICAL STUDY OF THE DIGESTIVE TRACT OF DASYPUS

HYBRIDUS AND ZAEDYUS PICHYI (MAMMALIA, DASYPODIDAE)

Silvia Estecondo '

Stella Maris Codön !

Emma B. Casanave !

ABSTRACT

The histomorphology of the digestive tract of the armadillos Dasypus hybridus (Desmarest, 1804) and

Zaedyus pichyi (Desmarest, 1804) was studied. It is similar to that of monogastric mammals. As in Chaetophractus

villosus (Desmarest, 1804) and C. vellerosus (Gray, 1865) there is a caecum between the small and the large

intestine. The pancreas of D. hybridus presents islets of Langerhans with irregular shape; in Z. pichyi they are

round.

KEYWORDS: Armadillos, histology, digestive tract, mammals.

INTRODUCTION

Dasypus hybridus (Desmarest, 1804) and Zaedyus pichyi (Desmarest, 1804) are

south american mammals very common in Argentina. D. hybridus is also found in

Paraguay, Uruguay and in the south of Brazil (TALMAGE & BUCHANAN, 1954). Z.

pichyi also lives in Chile (CABRERA, 1958). According to REDFORD (1985), Zaedyus

is carnivorous-omnivorous and Dasypus insectivorous.

The literature dealing with histomorphological aspects of the digestive tract of the

armadillos is scarce (GRASSE, 1955; RIET CORREA et al., 1965; ESTECONDO et

al., 1995). CUBA CAPARO (1979) partially studied Dasypus hybridus. We present the

histology of the digestive tract of Zaedyus pichyi and Dasypus hybridus.

MATERIAL AND METHODS

Adult animals of both sexes, from Bahia Blanca area, Buenos Aires, Argentina, were anesthetized with

sodium tiopentone (i.p.), perfunded with Bouin’s fluid, dehydrated, embedded in paraffin and sectioned at 5-7

1. Laboratorio de Histología Animal, Departamento de Biología, Universidad Nacional del Sur, San Juan 670, (8000) Bahía Blanca, República

Argentina.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 7-12, 04 out. 1996

8 ESTECONDO; CODÓN & CASANAVE

um thickness. Sections were stained with hematoxylin and eosin, Masson’s trichrome, Azan of Heidenhein and

peryodic acid Schiff”s reaction. The microscopie slides are deposited in the laboratory of Animal Histology of

the Universidad Nacional del Sur, Bahía Blanca.

RESULTS

The mucosa of the esophagus of Dasypus hybridus and Zaedyus pichyi has longi-

tudinal folds, that allow the expansion of the organ, they are covered by stratified

unqueratinized squamous epithelium (fig. 1, e) that becomes thicker toward the passage

to the stomach; lamina propria (lp) of dense connective tissue. Toward the posterior half

of the esophagus begins to appear smooth muscle fibers of longitudinal arrangement

belonging to the muscularis mucosae (mm). The submucosa (s) penetrates in the mucosal

folds; it is made up of loose connective tissue with a great number of blood vessels and

mucous acini (ma). The muscular layer is formed by striated muscle fibers and consists

of two layers, internal circular and external longitudinal. In the posterior portion of the

organ smooth muscle fibers begin to be intermixed within the circular layer. The adventitia

consists of loose connective tissue, covered by a single layer of squamous epithelium. In

the gastro-esophageal junction, the squamous stratified epithelium is replaced by a simple

cylindrical one. The muscular is composed by two smooth muscle layers. The internal

with circular arrangement, widens forming a sphincter. The external is longitudinal.

The mucosa of the stomach is lined with a simple columnar epithelium, tall,

surmounted by a top plate. The corion, scarce, is found among the gastric glands. The

glands are simple tubular with three different types: (1) cardial glands, restricted to the

cardial region of the stomach, they are coiled and formed by mucous cells; (2) fundic

glands (fig. 2, fg), the most abundant, constituted by the four characteristic cellular types

of mammals: surface epithelial cells, mucous neck cells, chief or zymogen cells and

parietal or oxintic cells; (3) piloric glands (fig. 3, pg), restricted to the final portion of the

stomach, they are constituted by mucous cells.

The muscularis mucosae constituted by smooth muscle fibers with longitudinal

arrangement, is observed between the corion and the submucosa. From the corpofundic

portion of the stomach, the muscularis mucosae is formed by two smooth muscle layers.

From the inner circular one, run fibers that penetrate among the glands; the outer layer is

constituted by longitudinal fibers. This arrangement remains throughout the digestive

tract.

The submucosa is made of loose connective tissue highly vascularized. The mus-

cular layer is formed by smooth muscular fibers arranged in two layers, the inner circu-

lar and the exterior longitudinal. The last one is more prominent toward the piloric portion

of the stomach. Outside of the muscle layer there is the serosa of loose connective tissue,

covered by a single layer of flattened mesothelial cells. A muscular sphincter separates

the stomach from the small intestine.

The small intestine can be divided in three regions, duodenum, jejunum and ileum.

There are folds formed by mucosa and submucosa and villi (fig. 4, v), that included only

the mucosa layer. Invaginations of the epithelium constitute the glands of Lieberkühn.

The epithelium that covers the mucosa consists of a single layer mainly composed of

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 7-12, 04 out. 1996

Histological study of the digestive tract... 9

columnar absorptive cells with striated border. Among these cells there are goblet cells

that increase in number toward the caecum. The lamina propria is narrow and made up

of loose connective tissue. The fibers of the inner layer of the muscularis mucosae penetrate

in the villi and between the glands. The submucosa layer, composed of loose connective

tissue highly vascularized, form the core of the mucosal folds. The muscular layer is

made up of smooth muscle with typical arrangement. The serosa of loose connective

tissue is covered by a mesothelium.

In the duodenum the villi are shorter than in the jejunum and ileum, and there are

glands of Brünner in the submucosa. In the jejunum and ileum there are more goblet

cells than in the duodenum, there are no glands of Briinner and the submucosa is thinner.

There are lymphatic nodules in the corion and in the submucosa. Between the small and

the large intestine there is a caecum. In the passage from the small intestine to the caecum

there is a muscular sphincter. The caecum differs from the small intestine because it has

no villi (fig. 5). Mucosa, submucosa, muscular and serosa present characteristic

arrangement. Between the caecum and the large intestine there is no muscular sphincter.

Histologically the large intestine (fig. 6) resembles the caecum. The epithelium (e)

is made up of a single layer of columnar cells with striated border. The goblet cells

increase in number toward the rectum. The rectum (fig. 7) 1s histologically similar to the

large intestine. Nevertheless the external muscular layer is thicker than the inner one. In

the transition from the rectum to the anal region the epithelium becomes stratified

squamous. A few distance from this passage, it becomes queratinized.

The liver, the gall bladder and the exocrin portion of the pancreas present the

typical histological structure found in mammals. The islets of Langerhans (1) are round

in Z. pichyi (fig. 8). In Dasypus they are irregular in form and size (fig. 9).

DISCUSSION

The digestive tracts of Z. pichyi and D. hybridus are histologically very similar

and are comparable to those of Chaetophractus villosus (Desmarest, 1804) and C.

vellerosus (Gray, 1865); (ESTECONDO et al., 1995). They have all the typical

monogastric mammals structure. As was suggested for C. villosus and C. vellerosus

(ESTECONDO et al., 1995), the sphincter that separates the caecum from the small

intestine might participate in the regulation of the intestinal flow. CUBA-CAPARO (1979)

indicates the presence of a caecum with villi in D. hybridus and observed in this organ

the presence of tubular glands similar to those of the gastric cardial region. According to

our observations, the caecum of Z. pichyi and D. hybridus are histologically similar to

the large intestine but none of the two organs presents villi or cardial like glands. The

pancreas of Z. pichyi resembles that of C. villosus (ESTECONDO et al., 1995). The

pancreas of Dasypus hybridus is comparable to that of C. vellerosus (ESTECONDO et

al., 1995) and to that of D. septemcinctus (Linnaeus, 1758) (RIET-CORREA et al., 1965).

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CODON & CASANAVE

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Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81)

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7-12, 04 out. 1996

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81)

12 ESTECONDO; CODÓN & CASANAVE

REFERENCES

CABRERA, A. 1958. Catálogo de los mamíferos de América del Sur. Revta Mus. argent. Cienc. nat.

Bernardino Rivadavia, Buenos Aires, 4: 1-307.

CUBA-CAPARO, A. 1979. Atlas de histología del armadillo de 7- bandas Dasypus hybridus. Buenos Aires.

Panamerican Center of Zoonosis, OPS/OMS. 166 p.

ESTECONDO, S.; CODONS.M. & CASANAVE, E. B. 1995. Histología del tracto digestivo deChaetophractus

villosus (Desmarest, 1804) y C. vellerosus (Gray, 1865) (Mammalia, Dasypodidae). Iheringia, Ser. Zool.,

Porto Alegre, (78): 9- 18.

GRASSE, P.P. 1955. Ordre des Edentes. In: GRASSE, P.P. ed. Traité de Zoologie. Paris. Masson. v. 17, p.

1182-1266.

REDFORD, K.H. 1985. Food habits of armadillos (Xenarthra: Dasypodidae). In: MONTGOMERY, G. G. ed.

The evolution and ecology of Armadillos, Sloths and Vermilinguas. Washington, Smith. Inst. p. 429-

437.

RIET-CORREA, P; MARQUES, M. & HAASE, H. 1965. Pancreas extractable insulin and islets structure of

the armadillo Dasypus septemcinctus. Revta bras. Biol., Rio de Janeiro, 25 (3): 249-252.

TALMAGE, R. V. & BUCHANAN, G. D. 1954. The armadillo Dasypus novemcinctus. Rice Inst., Pamphlet,

41: 1-135.

Recebido em 28.03.1995; aceito em 11.09.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 7-12, 04 out. 1996

REDESCRIPCIÓN DE OTOCINCLUS FLEXILIS COPE, 1894

(SILURIFORMES, LORICARIIDAE, HYPOPTOPOMATINAE) CON UN

NUEVO SINÔNIMO!

Adriana Elbia Aquino”?

ABSTRACT

REDESCRIPTION OF OTOCINCLUS FLEXILIS COPE, 1894 (SILURIFORMES, LORICARIIDAE,

HYPOPTOPOMATINAE) WITH A NEW SYNONYM. Otocinclus flexilis Cope, 1894, distributed from Rio

Grande do Sul, Brazil, to Buenos Aires, Argentina, is redescribed. Otocinclus arnoldi Regan, 1909, is proposed

as anew junior synonym, supported by the analysis of morphometrics (supraoccipital height), meristics (longi-

tudinal series of plates) and color pattern.

KEYWORDS. Otocinclus, Hypoptopomatinae, Loricariidae, Neotropical freshwater, Taxonomy.

INTRODUCCIÓN

El género Otocinclus Cope, 1871 comprende a un grupo de loricáridos distribuidos

en las cuencas de los ríos Orinoco, Amazonas, San Francisco, Río de la Plata y ríos

costeros del sur de Brasil. La monofilia del género ha sido recientemente cuestionada

por SCHAEFER (1991) en un estudio sobre las relaciones filogenéticas de los géneros

de Hypoptopomatinae. Tres especies han sido citadas para la Argentina: Otocinclus vittatus

Regan, 1904, y O. arnoldi Regan, 1909, ambas descriptas para la cuenca del Plata y O.

flexilis Cope, 1894, originalmente descripta para el río Jacuí en el sur de Brasil (LOPEZ

et al., 1987; MALABARBA, 1989; AQUINO, 19944). A partir del análisis de material

ictiolögico de varias localidades, del examen de material tipo y en base a las descripciones

originales, O. flexilis es redescripta, y se propone que O. arnoldi es un sinónimo junior

de O. flexilis.

MATERIAL Y MÉTODOS

La descripción morfométrica y merística se realizó en base a 62 ejemplares adultos, 33 hembras y 29

1, Contribución científica nº 590 del Instituto de Limnologia “Dr. Raúl A.Ringuelet” (Universidad Nacional de La Plata, UNLP - Consejo Nacional

de Investigaciones Científicas y Tecnológicas, CONICET).

2. Instituto de Limnologia “Dr. Raúl A. Ringuelet” (UNLP- CONICET), Casilla de Correo 712, 1900 La Plata, Argentina. (Becario CONICET).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

14 AQUINO

machos. Las mediciones se efectuaron con 0,1 mm de precisiön, utilizando un ocular micrométrico incorpora-

do al microscopio binocular y un calibre manual. En los caracteres morfométricos utilizados se sigue a

GARAVELLO (1977), y los valores se presentan como porcentajes de la longitud estándar o la longitud de la

cabeza. La longitud de la cabeza es tomada entre el hocico y el extremo del supraoccipital, y la altura de la

cabeza a nivel del supraoccipital. Las placas predorsales son aquellas entre el supraoccipital y la primera espina

dorsal en forma de placa, anterior a la espina dorsal defensiva; las placas postdorsales, aquellas entre el fin de

la aleta dorsal y el primer radio caudal procurrente dorsal, y las placas postanales, aquellas entre el fin de la

aleta anal y el primer radio caudal procurrente ventral. El número de dientes es expresado como el rango

registrado respectivamente en premaxilar y dentario, considerando los lados derecho e izquierdo en forma

conjunta. El número de centros vertebrales incluye los centros del complejo de Weber. En el examen de caracteres

osteológicos y de las placas de origen dérmico, se utilizó material preparado mediante las técnicas de

HOLLISTER (1934) y DINGERKUS & UHLER (1977). Las abreviaturas institucionales utilizadas son: The

Academy of Natural Sciences, Philadelphia (ANSP); Museum of Natural History, London (BMNH); Instituto

de Limnologia “Dr. RaúlA. Ringuelet”, La Plata (ILPLA); Museo de Ciencias Naturales “Florentino Ameghino”,

Santa Fe (MFA-ZV), y Museo de La Plata, La Plata (MLP). En la lista de material examinado la abreviatura

“d&t” indica material diafanizado y tenido. Parte del material tipo utilizado (sintipos de Otocinclus flexilis y O.

fimbriatus) fue examinado a través de radiografías y mediciones cedidas por la ANSP.

Otocinclus flexilis Cope, 1894

(Figs. 1-4)

Otocinclus flexilis COPE, 1894:98, pl. 7, fig. 13 (sintipos ANSP 21622-21626 y 21756-21767; localidad tipo:

Rio Jacuí, Rio Grande do Sul, Brasil; radiografías examinadas). REGAN, 1904:267; EIGENMANN,

1907:122; 1910:412; FOWLER, 1915:237; 1954:129; DEVINCENCI & TEAGUE, 1942:22, lám.4, fig.1;

GOSLINE, 1945:100; POZZI, 1945:263, 275; DE BUEN, 1950: 78: RINGUELET & ARÁMBURU,

1957:20; 1961:52; RINGUELET et al., 1967:393-394; ISBRÜCKER, 1980:82; BERTOLETTI, 1985:121;

LÓPEZ et al., 1987:31; SCHAEFER, 1991:6 (relaciones filogeneticas); ALMIRÖN et al., 1994:207-208;

AQUINO, 1994b:217-222.

Otocinclus fimbriatus COPE, 1894:98-99, pl. 9, fig. 16 (sintipos ANSP 21585-21597 y 21752-21755; localidad

tipo: Rio Jacuí, Rio Grande do Sul; Brasil; radiografías examinadas); REGAN, 1904:267 (Syn.);

EIGENMANN, 1907:122 (clave).

Otocinclus arnoldi REGAN, 1909:234 (holotipo 9? BMNH 1908.12.5.13; localidad tipo:Rio de la Plata, Ar-

gentina; examinado). EIGENMANN, 1910:413; FOWLER, 1954:129; RINGUELET & ARÁMBURU,

1957:20; 1961:52; RINGUELET et al., 1967:392; 1975:63, 66; ISBRÜCKER, 1980:81. LÓPEZ et al.,

1987:31; IRIART & LÓPEZ, 1989:738-739; BARLA, 1991:166; Syn.n.

Diagnosis. Serie longitudinal total de placas 23 a 24 (ocasionalmente 25); las

primeras 2-5 con poro. Tres series de placas abdominales: 2 series laterales ordenadas, y

en la línea media una placa impar anterior seguida por una serie de placas dispuestas

irregularmente. Sin cresta supraoccipital. Fenestras dorsales del complejo pterótico-

supracleithrum-postemporal amplias, no uniformemente circulares. Primera espina dorsal

representada por un hueso pequefio en forma de “V” con los extremos anteriores truncos;

mecanismo para trabar la espina dorsal defensiva presente. Altura del cuerpo 19,3 a

26,5.

Descripción. Datos morfométricos y merísticos en tablas I y II. Cabeza redondeada,

relativamente grande, hocico corto (fig. 1); ancho cleitral a nivel de la espina dorsal

defensiva aproximadamente igual a la altura del cuerpo. Cuerpo algo comprimido. En

corte transversal, pedúnculo caudal rectangular y aristado: lados dorsal y ventral planos,

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

Redescripción de Otocinclus flexilis... 15

Tabla I. Morfometría y merística de Otocinclus flexilis: (A) holotipo de Otocinclus arnoldi (BMNH1908.12.5.13),

y (B) rango, media y desviación estándar (DS) de 62 ejemplares de laguna Chascomús y arroyo El Pescado

(Buenos Aires) (ILPLA 204 y 207). Valores expresados en porcentaje de la longitud estándar, a excepción de

las variables diámetro orbitario, distancia interorbitaria y longitud de hocico, expresadas como porcentajes de

la longitud cabeza.

A B A B

CARACTER RANGO MEDIA DS

Longitud estándar(mm) 44,1 24,8-41,5 31,5 4,5 Aleta dorsal 7 de,

Altura cuerpo PDR OBD OS nO, 1,5 Aleta pectoral 1,6 1,6

Longitud cabeza 34,0 30,3-37,1 33,9 1,5 Aleta ventral 1,5 >

Altura cabeza DIE] 7222787202 1,1 Aleta anal 1,4 1,4

Ancho cuerpo 22,9 19,6-25,6 22,1 1,1 Aleta caudal 1,14,1791,1441

Distancia predorsal 45,9 38,5-52,4 45,3 2,0 Dientes premaxilares 11-15

Diámetro orbitario 18,6 124-213 17,9 1,7 Dientes maxilares 10-13

Distancia interorbitaria 44,2 44,4-56,0 48,8 2,6 Serie longitudinal 23 23-24

Longitud hocico 44,1 12,2-485 42,3 4,5 Placas predorsales 2 2.

Altura pedünculo caudal 11,4 10,6-16,2 13,4 1,5 Placas postdorsales 14 14

Longitud pedünculo caudal 38,0 27,4-48,8 30,1 2,8 Placas postanales 10 10

Tabla IT. Morfometría de Otocinclus flexilis de la laguna Chascomüs y el arroyo El Pescado (Buenos Aires)

(ILPLA 204 y 207) discriminando sexos. n, número de ejemplares; DS, desviación estándar. Valores expresados

como porcentajes de la longitud estándar, excepto las variables diámetro orbitario, distancia interorbitaria y

longitud de hocico, expresadas como porcentajes de la longitud cabeza.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

HEMBRAS MACHOS

CARACTER n RANGO MEDIA DS n RANGO MEDIA DS

Longitud eständar (mm) So IRA Ss 29 24,8-32,9 29,3 1,8

Altura cuerpo 33 19,3-26,5 23,2 1,8 POP 22,6 dl

Longitud cabeza 30 30,3-37,0 33,7 1,6 29 30,6-37,1 34,1 ES)

Altura cabeza Sou 22 8 DOS 1,1 29/80 018,3222 7 20,2 1,0

Ancho cuerpo 33 20,4-25,6 22,4 2 29 19,6-23,9 ZEN, 0,9

Distancia predorsal 3 ASS A AST 1,9 29 38,5-49,3 44,9 21

Distancia pectoral-ventral 39170250, 220.6 1,6 29 17,3-21,4 19,6 1,0

Distancia ventral-anal 33 15,8-20,2 17,8 0,9 29 16,4-20,2 17,8 0,9

Diámetro orbitario 30221451E20,02717730 1,4 29 12,4-21,3 18,8 1,6

Distancia interorbitaria 30 45,0-56,0 494 2,7 29 44,4-54,1 48,2 2,2

Longitud hocico 30122 A839, aa O é) 29 40,0-47,4 42,6 1,9

Altura pedúnculo caudal 32 10,6-16,3 13,4 1,7 221587 198 2,

Longitud pedünculo caudal SS 721.0-48:8 u SOM ras 29 274-36,9 30,0 1,6

Longitud espina dorsal SD LS OD GA DD 29 21,5-31,2 26,8 2,0

Longitud espina pectoral 33 19,7-27,5 23,1 1,9 29 18,6-24,5 222 1,6

Longitud espina ventral 33 12,6-19,7 15,2 1,5 29 12,6-19,1 15,9 1.9

_ Distancia ventral-hocico SL 3179-477, 5°435 4,6 29 41,5-48,4 45,1 17

16 AQUINO

separados de los flancos por una quilla angulada, generalmente con odontodes mayores

a los adyacentes. Ojos en posición dorsolateral; altura por debajo de la órbita menor que

el diámetro de la órbita. Boca ínfera; superficie de los labios inferior y superior cubierta

de papilas y los märgenes con tentáculos pequefios. Un par de barbillas maxilares cortas,

con la base del eje cartilaginoso ubicada próxima al extremo distal del maxilar. Dientes

en el premaxilar 10 a 15; en el dentario, 10 a 13.

Aletas pectorales replegadas alcanzan la base de las ventrales. Origen de la dorsal

a igual nivel que el origen de las ventrales, y equidistante del hocico y la base de la

caudal. Caudal ahorquillada. Perfil predorsal suavemente convexo. Supraoccipital no

sobresaliente y sin cresta; generalmente en el extremo con un parche de odontodes de

tamano mayor a los adyacentes. Sistema de canales sensoriales presente en los

infraorbitales 1 al 5 y la placa portadora de canal de la mejilla. Preopérculo no visible

externamente y sin canal sensorial preopercular. Cuerpo y base de la aleta caudal cubiertos

de placas dérmicas, exceptuando la región inferior de la cabeza y la zona adyacente a la

base de las aletas pectorales, ventrales, anal y dorsal. Sin placas anteriores a la cintura

pectoral. Serie longitudinal con un total de 23-24 placas, ocasionalmente 25; sólo las

primeras 2 a 5 tienen canal sensorial. Una línea intercalada de placas determina la

superposiciön de las series laterales. Generalmente tres series de placas abdominales: las

laterales compuestas por placas elongadas y ordenadas en una serie regular; en la línea

media, una placa anterior impar, y detrás, una serie irregular de placas de menor tamafio

y de desarrollo variable en la ontogenia; entre las aletas ventrales, las mismas forman un

parche compacto de contorno regular. En algunos ejemplares se registró una placa ante-

rior impar y dos series laterales, cuya aproximación en la línea media se incrementa con

la longitud de los ejemplares. Aleta anal precedida por tres pares de placas laterales y

una o dos sobre la línea media de tamafio variable; extremos proximales del par anterior

de placas laterales separados entre sí.

Puente ventral de la cintura pectoral desprovisto de tegumento; superficie externa

cubierta por pequefios odontodes; la lámina del coracoides cierra totalmente la fossa

arrector, en la cual se ubica el músculo arrector ventralis profundus.

Complejo óseo pterótico-supracleithrum-postemporal con fenestras de tamafio y

forma variables; la mayor se ubica dorsalmente a la abertura de la cápsula de la vejiga

gaseosa. Aletas con odontodes a lo largo de todos los radios. Espina pectoral sin dientes

en forma de sierra. Primera espina dorsal (anterior a la segunda espina dorsal defensiva)

en forma de “V” con los extremos anteriores truncos o planos. Mecanismo de trabado de

la espina dorsal defensiva presente. Centros vertebrales 28 a 30.

Coloración: en material fresco, lateralmente color de fondo amarillo iridiscente;

amarillo pálido en ejemplares preservados en alcohol. Una banda lateral oscura se extiende

desde el hocico hasta el origen de la aleta caudal; sus características varían de manera

intrapoblacional y entre poblaciones: puede constituir una banda continua o fragmenta-

da en un número de 3 a 6 manchas de nitidez variable (fig. 2). Esta variación en el patrón

de coloración fue también verificada en ejemplares mantenidos en acuario. Hacia el

extremo posterior del pedúnculo caudal la banda se ensancha formando una mancha.

Dorso algo más claro que los flancos, y con una serie de manchas suaves que se disponen

detrás de la aleta dorsal en correspondencia con las manchas laterales cuando éstas están

presentes. En vista ventral, cuerpo casi blanco. Aletas con una mancha amplia en la base

y barras oscuras transversales. Aleta caudal con una mancha que cubre los radios medios

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

Redescripción de Otocinclus flexilis... 1%

EEIIIIIDDINBIIBBIEDIGBRBEBITINNG

OR 3

Figs. 1-3. Otocinclus flexilis: 1, y, vista lateral izquerda (ILPLA 204); 2, variación del patrón de colocación

(ILPLA 207), primera columna, 9, segunda columna, S; 3, holotipo de Otocinclus arnoldi, 9, vista lateral

derecha. Escala en mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

18 AQUINO

y una porciön de los radios del lóbulo inferior, lo que determina un patrón de coloración

asimétrico dorsoventralmente, y 3 ó 4 barras transversales.

Dimorfismo sexual: machos de longitud estándar superior a 21,0 mm presentan

dimorfismo sexual secundario a los lados del pedúnculo caudal. Los odontodes de las

últimas 2 ó 3 placas de la serie lateral inferior y algunas placas de la base de los radios de

la aleta caudal se distinguen por presentar sus extremos desviados hacia el dorso del

cuerpo, siendo la orientaciön general de los odontodes de superfícies adyacentes, hacia

el extremo caudal. La concentración de odontodes modificados se incrementa con la

longitud de los ejemplares. Así, las diferencias en la disposición y concentración

determinan un parche de límites definidos a ambos lados del pedúnculo caudal, ausente

en las hembras.

Papila genital presente en los machos.

Distribución geográfica: ríos costeros de Rio Grande do Sul, y cuencas de los ríos

Uruguay, Paraná, Río de la Plata y Salado (Buenos Aires) (fig. 4). El límite meridional

conocido de la distribución es aproximadamente a los 35º30"S 58°00’O (laguna de

Chascomús, Buenos Aires).

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: Porto Alegre, Vila Restinga, arroio Passo do

Salso, 29, 12.VII.1981, R.E. Reis leg. (MFA ZV-1.833). ARGENTINA. Corrientes: Bella Vista, arroyo Batel,

12, 10.X.1979, A.Miquelarena & J.Casciotta leg. (ILPLA 224); 76,79, 4 d&t, 12.X1.1980, R.Menni et al. leg.

(ILPLA 225); charcos de desborde del rio Santa Lucía entre 9 de Julio y Chavarria, 1 9, R.Menni et al. leg.

(ILPLA 226); río Santa Lucía, Paso Naranjitos, 1 G, 22, 04.X1.1976, C.Darrieu leg. (ILPLA 227); Bella Vista,

12 2, IX.1987, J.Casciotta leg. (ILPLA 228); 3 d&t (ILPLA 229); Santa Fe: río Colestine, 1 S (MLP XII-61-

22); 5 0, 75 9 (MLP 6-VII-61-32); San José del Rincón, 16 S, 43 9, 02.XI1.1991, L.Fernändez leg. (ILPLA

223); Entre Ríos: 26, 3 9 (MLP 2-11-62-41); 5 &, 5 9 (MLP 2-III-62-45); arroyo Ayuí Grande, 1 9, 01.1.1982,

J.Casciotta & F.L.Armengol leg. (ILPLA 219); Gualeguaychú, arroyo La Capilla, 26, 07.VII.1981, J.Casciotta

& F.L.Armengol leg. (ILPLA 220); Concepción del Uruguay, 15, E.Maury leg. (ILPLA 221); arroyo Nogoya,

35,96, VII. 1984, A.Miquelarena et al. leg. (ILPLA 222); Buenos Aires: Delta del Paraná, 25, 29 (MLP 21-

XI-31-26); río Reconquista, 16, 1 9, 23.V.1974, R.Taberner leg. (ILPLA 217); 8 S, X1.1979, R.Taberner leg.

(ILPLA 218); BMNH 1908.12.5.13); La Plata, laguna frente al aeroclub, 1 &, 14.VIII.1979 (ILPLA 216);

arroyo El Pescado, 12 6, 14 2, 3 d&t, 21.X1.1989, C.Ferraris et al. leg. (ILPLA 207); 19 6, 28 9, 3 d&t,

15.1V.1989, A.Miquelarena et al. leg. (ILPLA 208); 85, 7 2, XI1.1989, A.Almirón et al. leg. (ILPLA 209); 19,

09.V.1991, Spagnola et al. leg. (ILPLA 210); 66, 139, 7 d&t, 08.X.1992, A.Almirön et al. leg. (ILPLA 211);

8 &, 19 9, 04.XI1.1992, A.Miquelarena et al. leg. (ILPLA 212); arroyo sobre ruta provincial 11,1 0,8 9,

04.X11.1992, A.Miquelarena et al. leg. (ILPLA 213); arroyo Villoldo, 6065, 33 2, 02.VII.1989, Vizcaíno leg.

(ILPLA 214); 2 JS‘, 29.V.1982 (ILPLA 215); arroyo Castelli, 1 5,1 2, 27.V.1982 (ILPLA 201); 1 6,19,

29.V.1982 (ILPLA 202); laguna Chascomüs, 49, 1 d&t, 25.V.1985, R.Iriart leg. (ILPLA 204); Gral. Las Heras,

arroyo Los Pozos, 1 &, 19, 06.1V.1985, L.F. Aun leg. (ILPLA 205).

Discusión. O. arnoldi fue propuesta por REGAN (1909) a partir de un ejemplar

hembra, con origen “from the La Plata”. El material tipo es un ejemplar de acuario

donado por J. P. Arnold, por lo que la localidad de origen exacta es incierta. La localidad

tipo de O. flexilis es el río Jacuí, en Rio Grande do Sul, Brasil.

REGAN (1909) distingue a O. arnoldi por presentar el supraoccipital sin cresta

mediana y con el extremo fuertemente elevado, alcanzando el nivel del origen de la aleta

dorsal (fig. 3). De acuerdo a la descripción original, O. flexilis carece de dichas caracte-

rísticas. Sin embargo, la altura a nivel del supraoccipital no puede utilizarse para carac-

terizar a O. arnoldi. En el material examinado el extremo de la placa supraoccipital no '

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

Redescripción de Otocinclus flexilis... 19

# |

GRANDE Ri Jacuy

BUENOS

AIRES

100

Fig. 4 Distribución geográfica de Otocinclus flexilis. Cuadrados=localidades del material revisado;

estrella=localidad tipo de O. flexilis (rio Jacui, Rio Grande do Sul, Brasil).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

20 AQUINO

alcanza la altura del origen de la aleta dorsal. No obstante, en algunos ejemplares

(incluyendo parte de la serie sintipo de O. flexilis y O. fimbriatus) se registra un segundo

estado en el que la altura del supraoccipital se aproxima al nivel del origen de la dorsal.

Esto, debido a la disposición más cerrada y al mayor desarrollo de los odontodes del

extremo del supraoccipital, respecto a la situación de las placas adyacentes. Se comprobó

que el holotipo de O. arnoldi exhibe el segundo estado anteriormente mencionado.

De acuerdo a nuestras observaciones los caracteres morfométricos y merísticos de

O. arnoldi y O. flexilis se superponen (tabla I), semejanza también registrada en las

descripciones originales. En relación a la coloración, si bien en las descripciones originales

los patrones son diferentes, este carácter es inadecuado para distinguir a O. arnoldi y O.

flexilis como especies distintas, ya que el patrón propuesto por REGAN (1909) para

caracterizar a O. arnoldi se encuentra dentro del espectro de variación de la pigmentación

del material revisado de O. flexilis. REGAN (op. cit.) indica que O. arnoldi presenta una

amplia mancha longitudinal oscura en los flancos que finaliza en la base de la caudal

(fig. 3). COPE (1894) senala que O. flexilis posee 6 manchas oblongas que se oscurecen

en dirección a la cabeza y una serie de manchas en la región dorsal. Sin embargo, en los

especímenes examinados se constató que el número de manchas laterales varía de manera

intrapoblacional e interpoblacional, presentando desde una banda continua hasta una

serie de 3 a 6 manchas de nitidez variable (fig. 2). O. fimbriatus también descripta para

el río Jacuí en Rio Grande do Sul, y propuesta como un sinónimo de O. flexilis (REGAN,

1904), presenta 4 manchas en los flancos; este número, incluido en el rango del número

del manchas laterales de O. flexilis, apoya la sinonimia entre O. flexilis y O. fimbriatus.

En relación a las placas dérmicas modificadas en el pedúnculo caudal de los ma-

chos de O. flexilis mayores a 21,0 mm, este tipo de dimorfismo sexual secundario ha

sido registrado entre los Hypoptopomatinae también en machos de O. vittatus (AQUINO,

1994b).

La única cita de O. flexilis para la Argentina es DEVINCENZI & TEAGUE (1942),

con una descripción de material del río Uruguay medio. RINGUELET et al. (1967)

reconocen que los ejemplares revisados por DEVINCENZI & TEAGUE (op.cit.)

pertenecerían a Otocinclus, aunque discuten la asignación de los mismos a O. flexilis.

RINGUELET et al. (op.cit.) cuestionan incluso la validez de O. flexilis, sefialando que

la descripción original de COPE (1894) no responde a las características de Otocinclus.

Sin embargo, se considera que este cuestionamiento parte de una traducción incorrecta

del trabajo original (i.e., “pedúnculo caudal deprimido” en vez de “caras dorsal y ventral

del pedúnculo caudal planas”; tampoco hay incongruencias en el patrón de distribución

de las placas abdominales). Se reconoce así válida la cita de DEVINCENZI & TEAGUE

(1942).

En base a lo expuesto, y no habiendo hallado evidencia que apoye la validez de O.

arnoldi como especie distinta, se propone que constituye un sinónimo junior de O. flexilis.

El área de distribución conocida para esta especie se amplía, extendiéndose desde el

estado de Rio Grande do Sul en Brasil (COPE, 1894) hasta el centro-este de la provincia

de Buenos Aires en Argentina (IRIART & LOPEZ, 1989). Esta distribución se encuentra

en correspondencia con una de las áreas de endemismo de América del Sur propuesta

por VARI (1988), que incluye el sistema del Plata y pequefios ríos costeros del sudeste

de Brasil.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

Redescripción de Otocinclus flexilis... al

Agradecimientos. A Amalia Miquelarena y a Hugo López (ILPLA y MLP) por la lectura crítica y

minuciosa del manuscrito. A Roberto Reis (MCP), Scott Schaefer (ANSP) y referees anönimos de Iheringia

por sus correcciones y sugerencias. Por el préstamo y el envio de fotografias y mediciones de material tipo

respectivamente, a James Chambers (BMNH) y Scott Schaefer (ANSP). Por el préstamo de material de colecciön

a Amalia Miquelarena (ILPLA), Carlos Virasoro (MFA-ZV) y Hugo López (MLP).

REFERENCIAS BIBLIOGRÄFICAS

ALMIRON, A.; GARCIA, M.; PROTOGINO, L. & SOLARI, L. 1994. Observaciones ictiolögicas y

limnolögicas del arroyo “El Pescado” (Buenos Aires, Argentina). Tankay, Tucumán, 1: 207-208.

AQUINO, A.E. 1994a. Biosistemática de los Hypoptopomatinae (Pisces, Siluriformes, Loricariidae) de

la Argentina, La Plata, 129 p., Tesis Doctoral, Facultad de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de La

Plata. (No publicado)

— . 1994b. Secondary sexual dimorphism of the dermal skeleton in two species of the hypoptopomatine

genus Otocinclus (Siluriformes: Loricariidae). Ichthyol. Explor. Freshwaters, München, 5(3): 217-222.

BARLA, M.J. 1991. Species composition, richness and diversity of fish assemblajes in different habitats of a

pampean lake (Argentina). Annls Limnol., Paris, 27(2):163-173.

BERTOLETTI, J.J. 1985. Aspectos sistemáticos e biológicos da ictiofauna do rio Uruguai. Veritas, Porto

Alegre, 30(117):93-129.

COPE, E.D. 1894. On the fishes obtained by the naturalist expedition in the Rio Grande do Sul. Proc. Am.

phil. Soc., Philadelphia, 33: 84-118.

DE BUEN, F. 1950. El Mar de Solís y su Fauna de Peces (2.a parte). Serv. Oceanog. y de Pesca, Publicaciones

Científicas, Buenos Aires, (2): 49-144.

DEVINCENZI, G.J. & TEAGUE, G.W. 1942. Ictiofauna del Río Uruguay medio. An. Mus. Hist. nat.

Montevideo, 2.a serie, Montevideo, 5(4): 1-104.

DINGERKUS, G. & UHLER, L.D. 1977. Enzime clearing of alcian blue stained whole small vertebrates for

demonstration of cartilage. Stain Technol., New York, 52(4): 229-232.

EIGENMANN, C.H. 1907. VII. On further collections of fishes from Paraguay. Ann. Carneg . Mus., Pittsburgh,

4: 110-157.

— 1910. Catalogue of the Fresh-water fishes of tropical and south temperate America. Rep. Princenton

Univ. Exped. Patogonia 1896-1899 Zoology, Princenton, 3(2), 375-510.

FOWLER, H.W. 1915. Notes on Nematognathous fishes. Proc. Amer. phil. Soc., Philadelphia, 67: 203-243.

— . 1954. Os peixes de água doce do Brasil (4ta entrega). Arq. Zool. Est. S. Paulo, São Paulo, 9: 1-400.

GARAVELLO, J.C. 1977. Systematics and geographical distribution of the genus Paratocinclus Eigenmann &

Eigenmann, 1889 (Ostariophysi, Loricariidae). Arg. Zool., Est. S. Paulo, São Paulo, 28(4): 1-37.

GOSLINE, W.A. 1945. Catálogo dos Nematognatos de agua-doce da America do Sul y Central. Bolm. Mus.

nac. Rio de J., Nov. Ser., Zool., Rio de Janeiro, 33:1-138.

HOLLISTER, G. 1934. Clearing and dyeing fish for bone study. Zoologica, New York, 12: 89-101.

IRIART, N.R.& LOPEZ, H.L. 1989. Nuevas citas para la ictiofauna de la Pampasia deprimida. Limnobios, La

Plata, 2(10): 738-739.

ISBRUCKER, 1.J.H. 1980. Classification and catalogue of the mailed Loricariidae (Pisces, Siluriformes). Versl.

tech. Geg., Inst. Taxon.Zoöl. (Zoöl. Mus.), Univ. Amsterdam, Amsterdam, 22:1-176.

LOPEZ, H.L., MENNI, R.C. & MIQUELARENA, A.M. 1987. Lista de los peces de agua dulce de la Argenti-

na. Biol. Acuát., La Plata, 12: 1-50.

MALABARBA, L.R. 1989. Histórico sistemático e lista comentada das espécies de peixes de água doce do

sistema da Laguna dos Patos, Rio Grande do Sul, Brasil. Comun. Mus. Cienc. PUCRS, Sér. Zool., Porto

Alegre, 2(8): 107-179.

POZZI, D.J. 1945. Sistemática y distribución de los peces de agua dulce de la República Argentina. An. Soc.

Arg. Est. Geog., GAEA, Buenos Aires, 7(2):239-292.

REGAN, C.T. 1904. A monograph of the fishes of the family Loricariidae. Trans. zool. Soc. Lond., London,

18: 191-350.

REGAN, C.T. 1909. Description of three new freshwater fishes from South America, presented to the British

Museum by Herr J. Paul Arnold. Ann. Mag. nat. Hist.,ser. 8, London, 3(4): 234.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

159}

AQUINO

RINGUELET, R.A. 1975. Zoogeografia y ecologia de los peces de aguas continentales de la Argentina y

consideraciones sobre las áreas ictiolögicas de América del Sur. Ecosur, 2(3):1-122.

RINGUELET, R.A. & ARAMBURU, R.H. 1957. Enumeración sistemática de los vertebrados de la Provincia

de Buenos Aires. Mrio. Asuntos Agrarios, Buenos Aires, 119:1-94.

RINGUELET, R.A. & ARAMBURU, R.H. 1961. Peces argentinos de agua dulce. Agro, Buenos Aires,

3(7):1-98.

RINGUELET, R.A.; ARAMBURU, R.H. & ARAMBURU, A.A. de. 1967. Los peces argentinos de agua

dulce. La Plata, Com. Inv. Cient. Prov. Bs.As. 602 p.

SCHAEFER, S.A. 1991. Phylogenetic analysis of the loricariid subfamily Hypoptopomatinae (Pisces: Siluroidei:

Loricariidae), with comments on generic diagnoses and geographic distribution. Zool. J. Linn. Soc., London,

102: 1-41.

VARI, R.P. 1988. The Curimatidae, a lowland Neotropical fish family (Pisces: Characiformes); distribution,

endemism, and phylogenetic biogeography. In: VANZOLINI, PE. & HEYER, WR. Proceedings of a

workshop on neotropical distribution patterns, Rio de Janeiro, p.343-378.

Recebido em 24.11.1994: aceito em 11.09.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 13-22, 04 out. 1996

DESCRIPCIÓN DE TRES NUEVAS ESPECIES DE LYSSOMANES DE BRASIL

(ARANEAE, SALTICIDAE)

Maria Elena Galiano!

ABSTRACT

DESCRIPTION OF THREE NEW SPECIES OF LYSSOMANES FROM BRAZIL (ARANEAE,

SALTICIDAE). Lyssomanes vinocurae sp. n. from Bahia, L. tapirapensis sp. n. from Mato Grosso and L.

fossor sp. n. from Minas Gerais, Brazil, are described.

KEYWORDS. Araneae, Salticidae, Lyssomanes, new species, Brazil.

INTRODUCCIÓN

Los caracteres diagnósticos de la subfamilia Lyssomaninae fueron fijados por

GALIANO (1976); posteriormente fue dividida en tres grupos por WANLESS (1980), en

cuyo grupo II se incluyen los dos únicos géneros sudamericanos, Lyssomanes Hentz,

1845 y Chinoscopus Simon, 1901. Luego de una revisión de todas las especies de

Lyssomanes conocidas hasta 1980 (GALIANO, 1980), se describieron otras 10 especies

(BRIGNOLI, 1984; GALIANO, 1984; JIMENEZ & TEJAS, 1993), con lo cual el género

cuenta con 64 especies existentes y 2 extintas (WUNDERLICH, 1988; REISKIND, 1989).

Se conocen ambos sexos de 36 especies (56,2%). La escasez de especímenes en las

colecciones, procedentes de algunas áreas poco colectadas, hace que se considere de

utilidad la descripción de los ejemplares que aquí se tratan, pese a que el conocimiento

de dos de las especies se base en un solo sexo.

MATERIAL Y MÉTODOS

Las medidas se expresan en milímetros y se han tomado según GALIANO (1962) y la quetotaxia

según PLATNICK & SHADAB (1975), con algunas modificaciones. Abreviaturas: MACN, Museo Argentino

de Ciencias Naturales “Bernardino Rivadavia”; MZSP, Museo de Zoologia, Universidade de São Paulo; v,

ventral; p, prolateral; r, retrolateral; ap, apical; b, basal; OMA, OLA y OLP, ojos medios anteriores, laterales

anteriores y laterales posteriores, respectivamente; RC, región cefálica.

1. Museo Argentino de Ciencias Naturales “Bernardino Rivadavia”, Av. Angel Gallardo 470, 1405 Buenos Aires, Argentina. (Investigadora del

CONICET).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

24 GALIANO

Lyssomanes vinocurae Sp. n.

(Figs. 1-7)

Etimologia. El nombre de la especie es un homenaje a la abogada Berta Vinocur,

por la ayuda brindada a la autora en cuestiones legales.

Diagnosis diferencial. Lyssomanes vinocurae es semejante a L. longipes

(Taczanowski, 1871) y a L. tenuis Peckham & Wheeler, 1889, que integran el grupo

longipes ( GALIANO, 1980). L. vinocurae se diferencia de ambas especies por la

quetotaxia: en patas I y Il hay sólo 1 par de espinas látero-ventrales medianas en fémures

y 3 pares en metatarsos, en tanto que L. longipes y L.tenuis tienen 2 pares ventrales en

fémures y 5 o 6 en metatarsos. L. vinocurae es más parecida a L. tenuis, de la que se

distingue por tener manchas pardas menos extensas (fig. 3), el bulbo con el émbolo más

corto, la apófisis mediana muy larga, delgada e implantada sobre un área membranosa y

el borde del lóbulo retrolateral del tegulum, membranoso y transparente (figs.1, 2).

Conductos de copulaciön del epigino mucho más cortos enL. vinocurae que en L. tenuis,

los brazos de las espermatecas de L. vinocurae de igual grosor y orientados diferente-

mente que en L. tenuis (figs. 5, 6).

Descripción. Holotipo 5. Largo total 5,27. Prosoma: largo 1,90; ancho 1,63; alto

1,10. Clipeo: alto 0,12. Area ocular: largo 1,02; ancho de la 1º hilera, 1,05; de la 2°, 1,00;

de la 3º, 0,46; de la 4°, 0,83. Distancias entre 2° y 3º hileras, 0,20; entre 3° y 4°, 0,32.

Diámetro de ojos: OMA 0,53, OLA 0,33, OLP 0,28. Esternón: largo 0,97; ancho 0,87.

Quelíceros: moderadamente largos, divergentes en la mitad distal; promargen con 3 dientes

en el ángulo; retromargen con 6 dientes (fig. 7). Quetotaxia: Fémures I, I dl-1-1, pl,rl,

látero-v2; HI dl-1- 1, pl-1,rl-1; IV dl-1-1, pl-1, rl. Patellas III, IV di. Tibias I v2-2-

2-2-2; II dl, v2-2-2-2-2; HI dl-1, pl-1, rl-1; IV di-1, pl, rl-1. Metatarsos I, II v2-2-2;

IH pl,rl-1. Palpos, fémur dl-1-1, pl, rl; patella dl; tibia pl-1; cymbium dlb, pl-1,rl.

Palpo: figs. 1, 2. Opistosoma, largo 3,27.

Color en alcohol. Amarillo pálido (el ejemplar parece haber mudado

recientemente). Margen del prosoma con angosta banda parda, que alcanza el borde

externo de OMA. Clípeo amarillo, sin barba. Banda longitudinal pardo claro en el decli-

ve torácico. Ojos en grandes manchas negras; pelos blancos en los lados del área ocular

y pelos blanco nacarado en un triángulo en el margen anterior del prosoma. Quelíceros,

piezas bucales y esternón, amarillo pálido. Opistosoma amarillo pálido, con bandas gris

negruzco (fig. 3). Hileras negruzcas. Todas las patas amarillo pálido, con manchas par-

das así: patas I y II, retrolateral apical en fémur y patella; retrolateral basal y ambos lados

apicales en tibia; ambas caras laterales de metatarso y tarso. Pata III apenas oscurecida

en ápices de tibia, metatarso y tarso. Pata IV levemente oscurecida en ambas caras laterales

de base y ápice de tibia; retrolateral en metatarso; tarso pardo claro.

Alotipo 9. Largo total 4,73. Prosoma: largo 1,87; ancho 1,40; alto 1,10. Clípeo:

alto 0,13. Area ocular: largo 0,98; ancho de la l? hilera, 0,98; de la 2? 0,97; de la 3º, 0,42;

de la 4º, 0,80. Distancias entre los ojos de la 2º y 3º hileras, 0,20; de la 3º y 4º, 0,33.

Diámetros de ojos: OMA 0,50, OLA 0,32, OLP 0,30. Quelíceros cortos, promargen con

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

Descripción de tres nuevas especies de Lyssomanes... 25

Figs. 1-3. Lyssomanes vinocurae sp. n., holotipo G, palpo: 1, retrolateral; 2, ventral; 3, cuerpo, dorsal. Escala

0,5 mm.

3 dientes, retromargen con 6. Quetotaxia: Fémures I, II d1-1-1, pl, rl, lätero-v2; HI, IV

dl-1-1, pl,rl. Patellas II, IV di. Tibias I, II v2-2-2-2-2; MI dl-1, pl, r1; IV dl-l, rl.

Metatarsos I, II v2-2-2; IH pl, rl. Opistosoma, largo 2,67. Epigino: figs. 5, 6.

Color en alcohol. Esencialmente como en el macho, pero con manchas negruzcas

mäs reducidas (fig. 4). Patas amarillo pälido con manchas asi: pata I, bandas en ambas

caras laterales en base y ápice de fémur y de patella, tercios basal y apical de tibia y

mitad basal de metatarso. Pata II con mancha retrolateral subapical en tibia. Patas III y

IV apenas oscurecidas en ápice de tibias. Palpos amarillos. Cara anterior del quelícero

con manchita parda basal. Clípeo con manchita marginal media.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

26 GALIANO

Material típico. BRASIL, Bahia: Trancoso (25 km S de Porto Seguro), holotipo

S (MACN 9365) y alotipo 2 (MACN 9366), M. J. Ramírez. col, 20.1.1993.

Nota. El macho y la hembra fueron colectados en una misma área; la similitud en

la proporción de los anchos de las hileras oculares y del patrón de disefio de manchas,

permite afirmar que pertenecen a la misma especie. Los especímenes fueron colectados

con red, golpeando en el follaje de los árboles que bordean las arenas de la playa.

Lyssomanes tapirapensis sp. n.

(Figs. 8-10)

Etimología. El nombre de la especie es un adjetivo derivado de la localidad típi-

ca.

Diagnosis diferencial. Especie del grupo robustus (GALIANO, 1980), parecida a

L. velox Peckham & Wheeler, 1889 y a L. taczanowski Galiano, 1980. Se distingue de L.

velox por no tener colorido negruzco, por el émbolo cilíndrico y no acintado (fig. 10)

como en L. velox y por tener muy desarrollado el lóbulo membranoso que acompafia a la

apöfisis media (fig. 9). Se diferencia de L. taczanowski por su menor tamafio, por el

lóbulo membranoso más largo y delgado, por el émbolo más largo y por el diferente

recorrido del conducto espermätico en el tegulum (fig. 9).

Descripción. Holotipo 3. Largo total 5,87. Prosoma: (fig. 8) largo 2,47; ancho

1,87; alto 1,40. Clípeo: alto 0,17. Area ocular: largo 1,20; ancho de la 1º hilera, 1,23; de

la 2°, 1,27; de la 3º, 0,62; de la 4°, 1,02. Distancias entre 2? y 3º hileras, 0,20; entre 3° y 4°,

0,35. Diámetro de ojos: OMA 0,65, OLA 0,42, OLP 0,40. Esternón: largo 1,17, ancho

1,03. Quelíceros verticales, cortos; promargen con 3 dientes, retromargen con 6.

Quetotaxia: Fémures I, II, II dl-1-1, pl-1, rl-1; IV dl-1-1, pl-1, rl. Patellas I-IV dl.

Tibias I, Il dl-1,v2-2-2,p1-1,rl-1; WIdl-1,v2,pl-1,rl-1; IV dl-1,pl, rl-1. Metatarsos

I, I v2-2-2, plb, rlb; HI v2, pl-1-1, rl-1; IV vIrb; pl-1-1, rl-1. Palpos: fémur dl, pl;

patella dl; tibia dl-1; cymbium dl, verticilo apical 4. Palpos: figs. 9, 10. Opistosoma,

largo 3,10.

Color en alcohol. Prosoma anaranjado amarillento, con RC amarilla; pelos ocula-

res amarillos cubriendo las manchas negras y el centro del área ocular. Opistosoma

amarillo, con un par de manchas circulares negruzcas aproximadamente en la mitad del

dorso; región apical negruzca; hileras y vientre amarillos. Patas amarillas, el tercio apical

de fémures, base y ápice de tibias, oscurecidos. Metatarsos amarillos. Tarsos I ligeramente

ensanchados en sentido vertical, con fimbrias dorsales y ventrales, poco densas; los otros

tarsos, amarillo pardusco.

Material típico. BRASIL, Mato Grosso: Barra do Tapirape, holotipo S (MZSP,

DZ 9273), Malkin col, 1-15.1.1966.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

Descripción de tres nuevas especies de Lyssomanes... 27

Figs. 4-7. Lyssomanes vinocurae sp. n., alotipo®; 4, opistosoma, dorsal; epigino: 5, vista ventral; 6, clarificado,

vista dorsal; holotipo I; 7, quelícero, cara posterior. Escalas 4 y 7, 0,5 mm; 5 y 6, 100 um.

Lyssomanes fossor sp. n.

(Figs. 11-13)

Etimología. Del latín fossor, minero, en alusión a la procedencia.

Diagnosis diferencial. L. fossor se asemeja a las especies del grupo nigrofimbriatus

(GALIANO, 1980) por la quetotaxia, las proporciones del área ocular, el epigino con

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

28 GALIANO

Figs. 8-10. Lyssomanes tapirapensis sp. n., holotipo G: 8, prosoma; palpo: 9, retrolateral; 10, ventral. Escala

0,5 mm.

dos orificios de entrada y conductos de copulaciön cortos (figs. 12, 13). Se diferencia

porque los orifícios están próximos a la línea media y no ampliamente separados como

en L. nigrofimbriatus, y los conductos se orientan de atrás hacia adelante y no a la inver-

sa como en dicha especie. La ubicación de L. fossor en alguno de los grupos anterior-

mente delimitados, por el momento es imposible.

Descripción. Holotipo 2. Largo total 5,53. Prosoma: (fig. 11) largo 2,33, ancho

1,83, alto 1,07. Clípeo: alto 0,18. Area ocular: largo 0,90; ancho de la 1º hilera, 1,13; de

la 2º, 1,28; de la 3º, 0,83; de la 4º, 0,97. Distancias entre los ojos de la 2? y 3º hileras, 0,15,

entre 3º y 4º, 0,32. Diámetros de ojos: OMA 0,57, OLA 0,28, OLP 0,27. Quelíceros:

promargen con 3 dientes, retromargen con 5. Quetotaxia: Fémures I, II, IH d1-1-1, pl-1,

rl-1; IV dl-1-1, rlap. Patellas I-IV di. Tibias I, II dl-1, v2-2-2-2, pl, rl; HI di-l, v2,

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

Descripción de tres nuevas especies de Lyssomanes... 29

Figs. 11-13. Lyssomanes fossor sp.n., holotipo®: 11, prosoma; epigino: 12, vista ventral; 13, clarificado, vista

dorsal. Escalas: 11, 0,5mm; 12 y 13, 100pm.

pl-1,r1-1; IV dl-1, pl, rl-1. Metatarsos I, I v2-2-2, pl,rl; HI v2, pl-1,rl-1; IV v2, pl,

rl. Epigino: figs. 12, 13.

Color en alcohol. Amarillo pálido. Sobre las manchas oculares, pelos anaranjado

ToJizo, así como en el borde anterior de RC.

Material típico. BRASIL, Minas Gerais: Serra do Caparaó, Vale Verde, holotipo

9 (MACN 9367), M. J. Ramírez col., 9.VI.1994.

Agradecimientos. Al Dr. José Luiz Moreira Leme, por el préstamo de material indeterminado del

MZSP y al Lic. M. J. Ramírez por la donación de los ejemplares por él colectados.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

30 GALIANO

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BRIGNOLI, P. M. 1984. On some West Indian Mimetus and Lyssomanes (Araneae: Mimetidae, Salticidae).

Bull. Br. Arachnol. Soc., London, 6(5): 200-204.

GALIANO, M. E. 1962. Redescripciones de especies del género Lyssomanes Hentz, 1845, basadas en los

ejemplares típicos. Descripción de una especie nueva. Acta zool. lilloana, Tucumán, 18: 45-97.

—. 1976. Comentarios sobre la categoría sistemática del taxón “Lyssomanidae” (Araneae). Revta Mus. argent.

Cienc. nat. “Bernardino Rivadavia” (Ent.), Buenos Aires, 5(3): 59-70.

—. 1980. Revisión del género Lyssomanes Hentz, 1845 (Araneae, Salticidae). Op. lilloana, Tucumán, 30: 1-

104.

—. 1984. New species of Lyssomanes Hentz, 1845 (Araneae, Salticidae). Bull. Br. Arachnol. Soc., London,

6(6): 268-276.

JIMENEZ, M. L. & TEJAS,A. 1993. Two new species of the genus Lyssomanes (Hentz) from the Cape Region,

B. C. S., Mexico. J. Arachnol., Kansas, 21(3): 205-208.

PLATNICK, N. I. & SHADAB, M. U. 1975. A revision of the spider genus Gnaphosa (Araneae, Gnaphosidae)

in America. Bull. Am. Mus. nat. Hist., New York, 155(1): 1-66.

REISKIND, J. 1989. The potential of amber fossils in the study of the biogeography of spiders in the Caribbean

with the description of a new species of Lyssomanes from Dominican amber (Araneae: Salticidae). In:

WOODS, C. A. ed., Biogeography of the West Indies, past, present and future. Florida, Sandhill Crane

p. 217-227.

WANLESS, F. R. 1980. A revision of the spider genera Asemonea and Pandisus (Araneae: Salticidae). Bull.

Br. Mus. nat. Hist. (Zool.), London, 39(4): 213-257.

WUNDERLICH, J. 1988. Die Fossilen Spinnen (Araneae) im Dominikanischen Bernstein. Beitr. Araneologie,

Straubenhardt, 2: 1-378.

Recebido em 26.04.1995; aceito em 27.09.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 23-30, 04 out. 1996

ACANTHODISCUS NEW GENUS AND GENUS ANHETEROMEYENIA

REDEFINED (PORIFERA, SPONGILLIDAE)

Cecília Volkmer-Ribeiro'

ABSTRACT

The Neartic-Neotropical genus Anheteromeyenia Schröder, 1927 is restricted and redefined to include

A. argyrosperma Potts, 1880, type species and A. ornata (Bonetto & Ezcurra de Drago, 1970) comb. n..

Acanthodiscus, new genus, with a Paleartic, Neartic-Neotropical distribution is proposed for A. ryderi (Potts,

1882) comb. n., type species, and A. sheilae (Volkmer-Ribeiro, De Rosa-Barbosa & Tavares, 1988) comb. n..

KEYWORDS. Neartic-Neotropical, freshwater sponges, Anheteromeyenia, Acanthodiscus, new genus.

INTRODUCTION

The sub-genus Anheteromeyenia Schröder (1927), elevated to generic rank by

LAUBENFELS (1936), was originally defined to contain those Heteromeyenia Potts,

1881, species which missed microscleres. PENNEY & RACEK (1968) selected Spongilla

argyrosperma Potts, 1880, as type species, enlargened Schröder’s original definition,

recognized the exclusive characters of A. argyrosperma and grouped the few species of

the genus into two morphologically distinct groups. A. argyrosperma was solely placed

in a group on account of its gemmules having a distinct porus tube and two classes of

gemmoscleres differing in lenght rather than in shape. The other four species, A.

ryderi (Potts, 1882), A. pictouensis ( Potts, 1885 ), A. conigera (Old, 1931) and A.

biceps (Lindenschmidt, 1950), composed the second group of species having gemmules

devoid of a porus tube and with two classes of gemmoscleres exhibiting sharp differences

in shape as well as in size. BONETTO & EZCURRA DE DRAGO (1970) described

Radiospongilla ornata from argentinian waters. The gemmules in this species, similarly

to those of A. argyrosperma, have a distinct porus tube and gemmoscleres grading

from longer to shorter birotulates with rotules composed of an irregular arrangement

of rays or spines. VOLKMER-RIBEIRO et al., 1988 described Anheteromeyenia sheilae

1, Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotänica do Rio Grande do Sul, C.P. 1188, 90001-970, Porto Alegre, RS, Brasil (Fellow researcher of

CNPq).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

32 VOLKMER-RIBEIRO

from South Brazil, included in the A. ryderi species group. The characteristics shared by

Anheteromeyenia argyrosperma and A. ornata recommend the restriction of genus

Anheteromeyenia to the type species plus 4. ornata. The new genus Acanthodiscus is

proposed for A. ryderi and A. sheilae. The characteristics presented in common by the

two species are not shared with species in any of the presently known genera of freshwater

sponges.

Abbreviations used: ANSP, Academy of Natural Sciences of Philadelphia; MCN,

Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre;

MNRJ, Museu Nacional da Universidade Federal do Rio de Janeiro. Measurements in

micrometers.

Anheteromeyenia Schröder, 1927

Heteromeyenia (Anheteromeyenia) SCHRÖDER, 1927: 108 (partim).

Anheteromeyenia LAUBENFELS, 1936: 36 (partim ); PENNEY & RACEK, 1968: 114 (partim);

Radiospongilla BONETTO & EZCURRA DE DRAGO, 1970: 39 (partim); DE ROSA-BARBOSA, 1984:

129 (partim).

Type species: Spongilla argyrosperma Potts, 1880, subsequent designation by

PENNEY & RACEK, 1968: 114.

Diagnosis. Freshwater sponges with two series of slim, spiny, irregularly

birotulated gemmoscleres which gradually proceed from long, into short ones; rotules of

the longer gemmoscleres consisting of long recurved clawlike hooks, regular or irregularly

placed around the shaft extremities; shorter gemmoscleres reaching about half the size

of the long ones, their rotules consisting of several recurved or randomly turned small

spines arranged in one or more irregular circles at the shaft extremities. Shafts of the

longer gemmoscleres stout and with large spines, sometimes a ring of larger spines

present at middle of the shaft; shafts of the shorter gemmoscleres slimmer with abundant

small spines; spines in the middle portion of the shaft in both classes are straight whilst

those placed towards the extremities are usually recurved. The shorter gemmoscleres

predominate in the gemmular coat. Microscleres absent.

Redescription. Sponges forming very shallow gray or green incrustations or

sponges perceived only by the conspicuous gemmular patches partially covered by a

few megascleres.

Skeleton reduced and progressing from an irregular deposition of the megascleres

on the gemmules to a few largely spaced horizontal fibers giving off very few lateral

fibers. The very slim fibers are one or two spicules thick; ectosome thick at places.

Osculae few and inconspicuous.

Megascleres stout, sparsely spined, straight to slightly curved, abruptly pointed

oxea. Spines at the extremities of the spicules turned towards the spicule ends.

Gemmoscleres as in the genus diagnosis.

Gemmules abundant, close to the substrate, large; foraminal tube short, delicate,

straight, set in a conical depression in the fully developed gemmules. Gemmoscleres

rather radially embedded in one single layer in the pneumatic coat, the larger gemmoscleres

projecting half of their shafts beyond the level of the outer coat or supporting its

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

Acanthodiscus new genus ... 33

proeminences. Inner gemmular coat thick, pneumatic coat also thick with small polyedrical

air spaces, outer gemmular coat thin and smooth.

Distribution. Neartic and Neotropical.

Key to the Anheteromeyenia species

1. Gemmoscleres of the long class with rotules consisting of a circle of regular or

irregular large, sometimes bifid, recurved clawlike hooks; shaft spines large, few

RR RI) SUS BAUEN. ER CRISTINE, CERA B DAL ELES, Sa A IRÃ A. argyrosperma

Gemmoscleres of the long class with rotules consisting of a circle of regular or, more

frequently, an irregular grouping of recurved spines; shaft spines small, numerous

RR PIS DL MANIA EN A SA a RIA DNA ARIADNE IE A. ornata

Anheteromeyenia argyrosperma (Potts, 1880)

( Figs. 1,2,6,10)

Spongilla argyrosperma POTTS, 1880: 357; 1887: 239, pl. VI, fig. 1; pl. XI, figs. I, I, type locality Lehigh

River at Lehigh Gap, Pennsylvania, USA.

Anheteromeyenia argyrosperma; PENNEY & RACEK, 1968: 116, pl. 10, figs. 8,9, 10 (and synonymy );

HARRISON, 1974: 37; VOLKMER - RIBEIRO & TRAVESET, 1987: 233, fig. 6 (only topotypes

found, ANSP); FROST, 1991: 115, fig. 4.9; RICCIARDI & REISWIG, 1993: 666, fig. 1.

Redescription. Sponge forming delicate incrustations consisting of patchy groups

of large, whithish gemmules which may be covered by an irregular deposition of

megascleres. Living sponge gray or green (when associated to symbiotic algae).

Megascleres small, thin, slightly curved to sigmoid, sparsely spined, abruptly

pointed anfioxea, spines at the extremities of the sclere turned towards the sclere ends.

Gemmoscleres forming a grading series of slim, spiny, domeshaped birotulates

with small rotules. The series runs from long, stout, birotulates with rotules consisting of

a circle of usually irregular, rarely regular, large, sometimes bifid, recurved hooks to

short, slim birotulates with rotules consisting of a circle or of a terminal grouping of

irregular, small spines. Shafts of the longer birotulates with a few large spines, shafts of

the short birotulates with abundant small spines; spines at the middle part of the shaft in

both long and short birotulates are straight whilst those placed towards the extremities

are recurved ( figs. 1,2, 6, 10).

Gemmules abundant, large, silvery, provided with a thick pneumatic coat and a

broad, short, foraminal tubule set in a conical depression of this coat. Pneumatic coat

consisting of regular, polyedrical alveoli. Gemmoscleres radially embedded in this coat

in one single layer, the longer gemmoscleres projecting their distal ends far beyond the

pneumatic coat or supporting its conical proeminences. Some megascleres are usually

found tangentially embedded in the pneumatic coat. Outer coat thin ( fig. 6 ). Gemmules

loosely to strongly solded to the basal plate and forming irregular groups of two to several

ones gapped together by a number of megascleres singly stuck against the walls of any

two closely set gemmules.

Skeleton drastically reduced to a disorderly deposition of megascleres around

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

34 VOLKMER-RIBEIRO

and on top of the gemmular groups, such a deposition may progress as to partially conceal

the gemmules; in such cases a granular ectosome may form but no oscules can be perceived

in it.

Dimensions. Megascleres length 133 - 329, width 7 - 15; longer gemmoscleres

length 114 - 179, width 5.9 - 10.2; shorter gemmoscleres length 57 - 89, width 3.9 - 6.7;

diameter of gemmules 494 - 686.

Distribution. Eastern half of the Neartic Region, from Quebec and New

Brunswick (Canada) to Florida (USA)(FROST, 1991; RICCIARDI & REISWIG, 1993).

Habitat. The species is found in running waters but also occurs in lakes, ponds

and even small standing roadside waters. It seems to prefer submersed stems and timber

as support and has been found in pH and conductivity ranging respectively from 4.2 to

7.5 and 80 - 750 micromhos / cm (HARRISON, 1974).

Examined material. USA. Pennsylvania: Lehigh River at Lehigh Gap, topotypes, XI. 14. 1881, E.

Potts leg. (ANSP 4538, 4587, 4588, 4589); New Jersey: River Styx, Lake Hopatcong, fragment of timber with

several gemmular groups, 1882, E. Potts leg. (ANSP).

Remarks. The species was briefly introduced by POTTS (1880). A detailed

redescription was presented by POTTS (1887). PENNEY & RACEK (1968: 666)

synonymized A. argyrosperma var. tenuis m the nominal species. RICCIARDI &

REISWIG (1993) studied a large number of A. argyrosperma specimens from Canada

and reported the gemmoscleres to be so intergrading in many specimens as to make it

impossible to distinguish two size classes. That in fact holds true for gemmoscleres taken

out of several gemmules from a single specimen (fig. 10) as well as for those from one

single gemmule. However, some entire gemmules taken out of a same specimen exhibit

two very conspicuous size classes of gemmoscleres, the largest ones projecting their

remarkable rotular hooks far beyond the level of the small ones (fig. 6).

Anheteromeyenia ornata (Bonetto & Ezcurra de Drago, 1970) comb. n.

(Figs.3-5,11)

Radiospongilla ornata BONETTO & EZCURRA DE DRAGO, 1970: 39, fig. 1, holotype, Arroio Paranay

Guazü, Misiones Province, Argentina, 18. IX. 1968, I. Ezcurra de Drago leg. (Instituto Nacional de

Limnologia, Santa Fé, Argentina, examined); DE ROSA-BARBOSA, 1984: 130, fig. 1.

Redescription. Sponge forming inconspicuous, fragile crusts consisting of a

very thin skeleton barely covering the abundant gemmules. Living sponges with gray

and green portions.

Megascleres thin to thicker, slightly curved, sometimes sigmoid, sparsely spined,

abruptly pointed anfioxea; spines small, acute, the ones at the extremities of the scleres

turned towards the sclere ends.

Gemmoscleres consisting of two not sharply defined size classes of stout, strongly

spined dome to pointed shaped birotulates. Birotulates of the longer class fewer in number,

their rotules consisting of an irregular arrangement of long recurved spines around the

shaft ends, shafts in this class with several large spines, some of them usually grouped at

the middle of the shaft; birotulates of the short class predominate in the gemmular coat,

rotules with a very irregular arrangement of also irregular, short, recurved spines; shafts

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

Acanthodiscus new genus ... 35

of the short class with abundant, regularly spaced small spines; spines in the middle

portion of long and short birotulates are straight whilst those placed towards the extremities

are incurved inwards. Both long and short class gemmoscleres may exhibit second and

third rows of rotular spines or conspicuous swellowings of the middle shaft. Also some

small, spiny, spherical to irregularly shaped spicules, which seem to be abnormal

gemmoscleres may be found in the gemmules (figs. 3 - 5, 11).

Gemmules abundant, quite large, brown to redish brown, singly solded to the

substrate or forming groups of many gemmules, one gemmule thick, solded to each other

and to the substrate. Gemmules provided with a single cylindrical foraminal tubule set in

a conical depression of the gemmular surface. Pneumatic coat thick with polyedrical

alveoli, gemmoscleres rather radially embedded in this coat in one single layer, the longer

gemmoscleres projecting beyond the level of the short ones. Several megascleres are also

seen tangentially embedded in the pneumatic coat.

Dimensions. Megascleres lenght 150 - 370, width 5 - 16; long class gemmoscleres

lenght 103 - 170, widht 4 - 9.5; short class gemmoscleres lenght 61 - 126, widht 5.5 - 9.6;

diameter of gemmules 500 - 650.

Distribution. Brazil, from the Amazon Basin (Amazonas State) and several rivers

in Rio Grande do Sul State to Parana River (Misiones Province, Argentina).

Habitat. The species seems to prefer rocky substrates in fast running waters.

Examined material. BRASIL. Amazonas: Presidente Figueiredo, Igarapé da Antonia, right margin

of Uatumä River, downstream the Balbina Dam, 05. IX. 1990, C. Volkmer Ribeiro leg. (MCN 2703); Rio

Grande do Sul: Nova Petrópolis, Caí River, 20. II. 1980, C. Volkmer Ribeiro leg. (MCN 697, 1031); Santana

da Boa Vista, Arroio do Moinho, on the rocky banks under the bridge in the road taking from the town of

Santana da Boa Vista to the Camaquã copper mine, 20. I. 1980, C. Volkmer-Ribeiro leg. (MCN 703, 735).

Acanthodiscus new genus

Heteromeyenia (Anheteromeyenia) SCHRÖDER, 1927: 108 (partim).

Anheteromeyenia LAUBENFELS, 1936: 36 (partim); PENNEY & RACEK, 1968: 114 (partim).

Etymology. The name referes to the spiny character of the outer and inner faces

of the disk-like rotules in the short class gemmoscleres.Gender masculine.

Type species: Heteromeyenia ryderi Potts, 1882.

Diagnosis. Freshwater sponges with two classes of birotulate gemmoscleres,

distinct in shape and size, the shorter class about two thirds the lenght of the long one.

Short class, spool- shaped, with spiny or smooth shafts and expanded, flat, microspined

or microgranulated rotules with borders serrated or cut in several straight rays, the outer

rotule sometimes smaller than the inner one. Long class gemmoscleres with cylindrical,

stout, spiny shafts and small, smooth, umbonate rotules composed of an irregular number

of short and curved hooks or rays. Shaft spines in the short class straight and grouped in

the middle of the shaft, with usually one or two larger spines; shaft spines in the long

class usually conspicuously curved, grouped in the middle of the shaft or irregularly

distributed along it.

Description. Sponges forming light green, white, yellow or brown, thin crusts

or sponges forming small hemispherical growths or yet lobose or ramose, larger massive

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

VOLKMER-RIBEIRO

Figs. 1-5. Anheteromeyenia argyrosperma (Potts): |, 2, longer and shorter gemmoscleres; Anheteromeyenia

ornata (Bonetto & Ezcurra de Drago): 3, longer gemmoscleres; 4, one long and one short gemmoscleres; 5,

shorter gemmoscleres with middle inflation of the shaft and double or triple rotules.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

Acanthodiscus new genus ... 37

specimens, which may be 5 - 7 cm in diameter. Main skeleton an irregular network of

short and thin spicule fibers, spongin rather abundant, ectosome thick, irregularly incrusted

with megascleres and hispid from the piercing of the upper spicule fibers. Oscula small,

conspicuous.

Megascleres slender to stout, sparsely to strongly spined, straight to slightly

curved abruptly pointed anfioxea, spines straight or turned to the sclere extremities,

sometimes one or a few large spines turned to different angles are present.

Microscleres absent. Gemmoscleres as in the genus diagnosis.

Gemmules abundant, white, from small to large, distributed from the base to

the top of the sponge, gemmoscleres radially embedded in the thick pneumatic coat.

Foraminal tube cylindrical , short, straight. Inner gemmular coat three-foliated, pneumatic

coat with large polyedrical air spaces, outer gemmular coat thick and granular. The short

spool-shaped anfidiscs cointained in the pneumatic coat, the long class umbonate anfidiscs

projecting beyond the level of the pneumatic coat.

Distribution. Paleartic, Neartic and Neotropical.

Habitat. Seasonal ponds behind the dune belt along the northwestern border of

the Paleartic Region and the eastern border of the Neartic and the Neotropical regions.

Key to the species of Acanthodiscus

1. Rotules of the short class gemmoscleres serrated and bearing a conical shaft projection

or shaft projection missing; rotules of the long class gemmoscleres composed of

long recurved hooks, with bifid or lanceolated extremities, shaft spines in this

CURTE EEE, ao ee RN A. ryderi

Rotules of the short class gemmoscleres deeply incised, daisy-shaped and bearing

a rounded shaft projection; rotules of the long class gemmoscleres composed of

thick, short recurved rays ending in small, curved spines, shaft spines in this class

CEPE Rene EG e DD END TE 1 RN hun A. sheilae

Acanthodiscus ryderi (Potts, 1882) comb. n.

(Eies. 7,8)

Heteromeyenia ryderi POTTS, 1882: 13; 1887: 242, pl. XI, figs. IV, V, VI, type locality Cobbs Creek, Delaware

River, Philadelphia, Pennsylvania, USA, E. Potts leg., 1881.

Anheteromeyenia ryderi; PENNEY & RACEK, 1968: 117, pl. 10, fig. 1 (and synonymy ); POIRRIER,

1977: 62, figs. 1-4, VOLKMER - RIBEIRO & TRAVESET, 1987: 233, fig. 7 (lectotype ANSP - PO

4536); VOLKMER - RIBEIRO et al., 1988: 86; figs. 13-17; OKLAND & OKLAND, 1989:179, figs.

3-6; FROST, 1991: 116, fig. 4.10; RICCIARDI & REISWIG, 1993: 667, fig. 2 (and synonymy).

Redescription. Sponge light green when exposed to light, otherwise white or

_ brown. Sponge forming from small, compact, hemispherical crusts to large, thick irregular

crusts 5 cm high and 5 to 7.5 cm long growing into lobose, palmate or branching

terminations on or around submerged vegetation, timber or, more rarely, on stones. Surface

smooth, oscules conspicuous. Skeleton non fasciculated or irregularly fasciculated or

skeleton forming at the branches and lobes; “many slender, nearly parallel lines of slightly

fasciculated spicules, the network being completed by crossing lines of single or nearly

solitary spicules” (POTTS, 1887: 246).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43 , 04 out. 1996

38 VOLKMER-RIBEIRO

Megascleres from stout and short to longer and slender, from straight to slightly

curved, from heavily to sparsely spined, from abruptly to gradually pointed anfioxea,

the spines at the middle part of the spicules straight, from there on the spines are turned

towards each extremity.

Gemmoscleres birotulates of two classes distinct in shape and size. Long

birotulates with domeshaped small rotules composed of an irregular number of dissimilar,

recurved hooks with bifid or lanceolated ends, shafts cylindrical, stout, spined, their

spines equal in lenght and curvature with the hooks of the rotules, singly or irregularly

grouped along the shaft, rarely only at the middle of shaft. Short birotulates spool shaped,

with slender usually smooth shafts abruptly enlarging towards the rotules, sometimes

with a few, dissimilar, conical microspined spines at middle shaft; rotules large, flat,

thick, microgranulated, with crenulated or serrated borders and containing the conical

projection of the shaft, outer rotule sometimes smaller than the inner one (fig. 8).

Gemmules abundant, whitish, hemispherical, distributed from base to top of

the sponge, foraminal tube inconspicuous, cylindrical, standing not higher than the layer

of the shorter gemmoscleres; outer gemmular coat thick, granulated, pneumatic coat

thick, alveolar, the outer alveoli larger than the inner ones; inner gemmular coat

three-foliated; gemmoscleres radıally embedded in the pneumatic coat the shorter

class completely concealed in the pneumatic coat, the longer class with the outer rotules

projecting free beyond the level of the outer coat. The number of the longer gemmoscleres

varies from gemmule to gemmule (fig. 7).

Dimensions. Megascleres length 296 - 431, width 12 - 26; long class

gemmoscleres length 47 - 92, width 5 - 10; short class gemmoscleres length 33 - 49,

width 5 - 8, diameter of rotules 25 - 29; diameter of gemmules 300 - 800.

Distribution. An amphiatlantic distribution in the northern hemisphere with its

main range along the eastern coast of North America and Canada, one record from Central

America and records from the western coast of the British Islands, the Faroes and

southwestern Norway (OKLAND & OKLAND, 1989).

Habitat. Small lakes and ponds with fresh, brown waters, not far from the sea

border.

Examined material. USA. Philadelphia: Coobs Creek, Delaware River, 1881, E. Potts, leg., fragment

with gemmules from the lectotype (ANSP-PO 4536).

Remarks. Several authors presented arguments in favor of the idea that not four

species of the 4. ryderi group instead four ecomorphs of A. ryderi were involved. POTTS

(1887) himself relegated A. pictouensis to the subspecific rank. STEPHENS (1920) and

OKLAND & OKLAND (1989) extensively studied the many specimens of A. ryderi

registered from western Europe and found all variants between A. ryderi and A. pictouensis

thus considering the second species an ecomorph and synonym of the first one. POIRRIER

(1977) synonymized A. conigera (Old, 1931) withA. ryderi on grounds of his observation

of the 4. conigera gemmoscleres in gemmules produced in the laboratory from A. ryderi

specimens which lacked gemmules and were provenient from waters with presumably

low dissolved silica. HARRISON (1977) synonymized. A. biceps with Ephydatia mülleri

(Lieberkhün, 1855).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

Acanthodiscus new genus ... 39

Figs. 6-9. Gemmular coat with “in situ” longer and shorter gemmoscleres: 6, Anheteromeyenia argyrosperma

(Potts); 7, Acanthodiscus ryderi (Potts); 8, short gemmosclere and part of megasclere in A. ryderi (Potts); 9,

short gemmosclere in A. sheilae (Volkmer-Ribeiro et al.).

Acanthodiscus sheilae (Volkmer-Ribeiro, De Rosa-Barbosa & Tavares, 1988) comb. n.

(Fig. 9)

Anheteromeyenia sheilae VOLKMER-RIBEIRO et al., 1988: 85, figs. 3-12, 18, holotype, seasonal pond

behind the dunes, not far from Parque Nacional da Lagoa do Peixe, Tavares, Rio Grande do Sul, Brazil,

12.X1.1984, Sheila M. Pauls leg. (MNRJ, examined).

Redescription. Sponge forming small, irregular crusts on hardened nodules of

clay on the bottom of shallow seasonal ponds. Living sponge whitish. Skeleton devoid

of spicule fibers and consisting of an irregular tangential deposition of the megascleres

around and on top of the abundant gemmules. Spongin abundant gluing together

megascleres, gemmules and sand grains. Ectosome conspicuous at places with small

oscular orifices. Surface irregular and hispid from the projection of single spicules. Dry

sponge fragile and brittle.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

40 VOLKMER-RIBEIRO

Megascleres straight to slightly curved, sparsely spined oxea with

smooth, gradually pointed extremities, spines small (VOLKMER-RIBEIRO et al.,

1988, fig. 5). Young spicules grading from thin, curved or sinuous oxeas to the large

adult ones.

Gemmoscleres birotulates of two very distinct classes. (VOLKMER-RIBEIRO

et al., 1988, figs. 4, 6-11); long class birotulates fewer in number and with stout, cylindrical

shafts, bearing at middle part a group of irregular, large, straight spines and terminally

with small, thick, umbonate rotules composed of an irregular number of stout, short,

recurved rays abruptly slendering into small recurved spines; the short class gemmoscleres

predominate in the gemmular coat, they are spool-shaped birotulates about three fourths

the lenght of the long ones, shafts thinner at the middle part and there provided with a

group of large, irregular, straight spines or shafts smooth, terminally with large, flat,

granulated daisy-shaped rotules bearing a central umbonate projection of the shaft, borders

deeply, irregularly cut into straight rays, rotules equal or outer rotule smaller than the

inner one (fig. 9).

Gemmules abundant, whitish, spherical or hemispherical, foraminal tube

conspicuous straight with outcurved bord, contained into the thick pneumatic coat, outer

coat thick, granular, pneumatic coat alveolar, the outer alveoli larger than the inner ones,

inner gemmular coat thick, three-foliated, gemmoscleres radially embedded in the

pneumatic coat, the longer gemmoscleres projecting their outer rotules beyond the outer

coat in those gemmules where the pneumatic coat has not attained its full thickness.

Dimensions. Megascleres length 259 - 462, width 4 - 17; long class gemmoscleres

41 - 70, width 2 - 10; short class gemmoscleres length 35 - 54, width 4 - 8, diameter of

rotules 26 - 33; diameter of gemmules 370 - 543.

Distribution. Eastern part of Rio Grande do Sul State, Brazil.

Habitat. Seasonal, shallow ponds behind the settled, shruby dunes along the

coast-line or seasonal ponds farther inland.

Examined material. BRAZIL. Rio Grande do Sul: Tavares, 12. XI. 1984, Sheila M. Pauls leg.

(Paratype MCN 1128); Bagé, 27. XI. 1981, R. de Rosa Barbosa leg. (MCN 1030).

DISCUSSION

Genus Anheteromeyenia, redefined shares with genus Radiospongilla Penney

& Racek, 1968, the common possession of quite similar short gemmoscleres with

abundantly spined shafts and small rotules, each composed of an irregular arrangement

of incurved spines. Other characteristics shared by the two genera are the slim, spined,

abruptly pointed oxea megascleres with spines turned to the sclere ends, the absence of

microscleres, the rather radial setting of the gemmoscleres in the pneumatic coat, the

presence of a foraminal tubule and the abundance of gemmules. The two genera show

however clear cut definitions since in genus Radiospongilla the longer gemmosclere is

missing, the gemmules have a long foraminal tubule ( MASUDA et al., 1981: figs. 2, 3)

and a pneumatic coat with reticulate fibers (MASUDA & SATOH, 1984: figs. 12a, b, c)

instead of the polyedrical alveoli of the pneumatic coat and the short foraminal tubule in

Anheteromeyenia gemmules. In genus Radiospongilla there is also an abundant production

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

Acanthodiscus new genus ... 41

Fig. 10: Anheteromeyenia argyrosperma (Potts), gradual size variation of the gemmoscleres.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43 , 04 out. 1996

42 VOLKMER-RIBEIRO

Fig. 11: Anheteromeyenia ornata (Bonetto & Ezcurra de Drago), gradual size variation of the gemmoscleres.

of skeletal fibers and spongin. The author foresees as necessary a revision of genus

Radiospongilla Penney & Racek, 1968 in the search of other species which may exhibit

Anheteromeyenia characteristics as seems, for instance, to be the case with Radiospongilla

sendai (Sasaki) (SASAKI, 1936). That would eventually extend the distribution of genus

Anheteromeyenia to other geographical regions.

No evidences could be perceived supporting the hypothesis of the transformation

of the gemmoscleres in Anheteromeyenia argyrosperma and A. ornata into the regular

dome-shaped longer birotulate gemmosclere of Acanthodiscus new genus end less yet

into its also regular spool-shaped shorter gemmosclere. The proposition of the new genus

Acanthodiscus comes to shed light on a group of species with characteristics of its own.

No other genus of birotulate freshwater sponges missing microscleres has two so sharply

different class of gemmoscleres.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43, 04 out. 1996

Acanthodiscus new genus ... 43

Acknowledgments. To Dr. Ines Ezcurra de Drago, Instituto Nacional de Limnologia, Santa Fé,

Argentina, for the donation of a fragment of the holotype of Radiospongilla ornata; to Dr. George P. Davis

(ANSP) for loan of material of Spongilla argyrosperma and of Heteromeyenia ryderi; to Mr. Cleodir J. Mansan

(MCN) with the operation of the Museum JEOL-5200 SEM equipment.

REFERENCES

BONETTO, A. A. & EZCURRA DE DRAGO, I. 1970. Esponjas de los Afluentes del Alto Parana en la

Provincia de Misiones. Acta zool. lilloana, Tucumán, (27): 37-61.

DE-ROSA-BARBOSA, R. 1984. Reavaliação da fauna espongológica continental do Estado do Rio Grande

do Sul, Brasil, frente a novas coletas. Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (64): 127-148.

FROST, T. M. 1991. Porifera. In: THORP, J. H. & COVICH, A. P Ecology and classification

of North American freshwater invertebrates. New York, Academic. p. 95-124.

HARRISON, F. W. 1974. Sponges ( Porifera: Spongillidae). In: HART Jr., C. W. & FULLER, S.L.H., ed.

Pollution ecology of freshwater invertebrates. New York, Academic. p. 29-66.

— . 1977. The taxonomic and ecological status of the environmentally restricted spongillid

species of North America. II. Anheteromeyenia biceps (Lindenschmidt, 1950). Hydrobiology,

The Hague, 55 (2): 167-169.

LAUBENFELS, M. W. de. 1936. A discussion of the sponge fauna of the Dry Tortugas in particular and

the West Indies in general, with material for a revision of the families and orders of the Porifera. Publs

Carnegie Instn. , Washington, (467): 34-37.

MASUDA, Y. & SATOH, K. 1984. Scanning electron microscopic observation on gemmule coats of

freshwater sponges. Kawasaki Igakkai Shi Liberal Arts & Science Course, Kurashiki, (10): 55-

56.

MASUDA, Y.; TAKAHASHI, Y. & SATOH, K. 1981. Scanning Electron Microscopic Observation on

Micropyles and Spicules of the Fresh-water Sponges. Kawasaki Igakkai Shi Liberal Arts &

Science Course,, Kurashiki, (7): 65-77.

OKLAND, K.A. & OKLAND, J. 1989. The amphiatlantic freshwater sponge Anheteromeyenia ryderi. (Porifera,

Spongillidae) taxonomic-geographic implications of records from Norway. Hydrobiology , Den Haag,

(17): 177-188.

PENNEY, J. T. & RACEK, A.A. 1968. Compreensive revision of a worldwide collection of freshwater

sponges ( Porifera: Spongillidae) . Bull. U. S. natn. Mus., Washington, (272): 1-184.

POIRRIER, M. A. 1977. Systematic and ecological studies of Anheteromeyenia ryderi (Porifera: Spongillidae)

in Louisiana. Trans. Amer. Microsc. Soc., Lancaster, (96):62-67.

POTTS, E. 1880. On freshwater sponges. Proc. Acad. nat. Sci. Philad., Philadelphia, (1881): 356-357.

— . 1882. Three more freshwater sponges. Proc. Acad. nat. Sci. Philad, Philadelphia (1882):12-14.

— . 1887. Contribution towards a synopsis of the American forms of freshwater sponges with descriptions

of those named by other authors and from all parts of the world. Proc. Acad. nat. Sci. Philad, Philadelphia

(1887): 158-279.

RICCIARDI, A. & REISWIG, H.M. 1993. Freshwater sponges ( Porifera: Spongillidae) of eastern

Canada: taxonomy, distribution and ecology. Can. J. Zool., Ottawa, (71):665-682.

SASAKI, N. 1936. The fresh-water sponges obtained in Northeast Honshü, Japan. Saito Ho-On Kai

Museum Research Bulletin, Sendai, (9): 1-29.

SCHRÓDER, K. 1927. Über die Gattungen Carterius Petr. Astromeyenia Annandale und Heteromeyenia

Potts ( Porifera: Spongillidae ). Zool. Anz., Leipzig, 73: 101-112.

STEPHENS, J. 1920. The freshwater sponges of Ireland. Proc. R. Ir. Acad., Dublin, (35):204-254.

VOLKMER - RIBEIRO, C. & TRAVESET, A. 1987. Annotated Catalog of the Type Specimens of

Potts Species of Freshwater Sponges. Proc. Acad. nat. Sci. Philad., Philadelphia, (139): 223-242.

VOLKMER - RIBEIRO, C.; DE- ROSA-BARBOSA,R. & TAVARES, M.C.M. 1988. Anheteromeyenia

sheilae sp. n. e outras esponjas dulceagüicolas da região costeira do Rio Grande do Sul. Iheringia, Ser.

Zool., Porto Alegre, (68): 83-98.

Recebido em 13.03.1995; aceito em 10.10.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 31-43 , 04 out. 1996

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DESCRIÇÕES,TRANSFERÊNCIAS E NOVAS SINONÍMIAS EM

THERIDIIDAE (ARANEAE)

Erica Helena Buckup!

Maria Aparecida L. Marques!

ABSTRACT

DESCRIPTIONS, TRANSFERS AND NEW SYNONYMIES IN THERIDIIDAE (ARANEAE).

New combinations proposed: Achaearanea triguttata (Keyserling, 1891) and Anelosimus decoloratus

(Keyserling, 1886) from Theridion Walckenaer, 1805; Theridion leguiai Chamberlin, 1916, T. orgea (Levi,

1967) and T. quadripartitum Keyserling, 1891 from Achaearanea Strand, 1929. The first known males of these

species, except T. quadripartitum, are described and illustrated. The following new synonymies are established:

Chrysso perplexa Keyserling, 1886 with C. rubrovittata (Keyserling, 1884); Dipoena copiosa Levi, 1953 with

D. cordiformis Keyserling, 1886; D. itu Levi, 1963 with D. taeniatipes Keyserling, 1891; D. inca Levi, 1963

with D. tingo Levi, 1963; D. sicki Levi, 1963 with D. variabilis (Keyserling, 1886); Theridion querulum

Keyserling,1891 with T. tinctorium Keyserling, 1891. The female of Chrysso sulcata (Keyserling, 1884) and

the male of Thwaitesia simoni (Keyserling, 1884) are described and illustrated for the first time. The male

associated with de female of Dipoena foliata Keyserling, 1886 is actually the male of D. ira Levi, 1963. The

dorsal view of female genitalia of Tekellina guaiba Marques & Buckup, 1993 is presented.

KEYWORDS. Taxonomy, Theridiidae, new combinations, new synonymies, Neotropical.

INTRODUÇÃO

Theridiidae neotropicais dos gêneros Chrysso O.P.-Cambridge, Anelosimus

Simon, Dipoena Thorell, Achaearanea Strand, Theridion Walckenaer e Thwaitesia

O.P.-Cambridge foram revisados e redefinidos por LEVI (1955, 1962, 1963a, b, c, d, e).

LEVI (1963c) comentou que alguns nomes específicos poderiam se tornar sinônimos

quando houver um maior número de espécimens disponível, alertando que o

posicionamento de algumas espécies, especialmente em Achaearanea e Theridion, é

1. Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Caixa Postal 1188, CEP 90001-970, Porto Alegre, RS, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

46 BUCKUP & MARQUES

problemático, se representadas apenas por fêmeas. WUNDERLICH (1988) restringiu o

amplo gênero Dipoena à espécie-tipo D. melanogaster (C.L. Koch,1837), ao propor

Dipoenata e revalidar o smônimo Lasaeola Simon, caracterizando sucintamente os três

gêneros; ainda transferiu apenas algumas espécies neotropicais para um desses dois

últimos gêneros.

O exame de significativo número de espécimens de Theridiidae proporcionou

encontrar representantes do sexo oposto de espécies anteriormente conhecidas apenas

por um dos sexos e associar machos e fêmeas, descritos com nomes específicos diferentes,

determinando modificações taxonômicas. Neste artigo , é seguido o amplo conceito de

Dipoena sensu LEVI (1963b), uma vez que WUNDERLICH (1988) apresentou uma

revisão muito restrita, sugerindo alguns caracteres genéricos, que ainda não haviam sido

suficientemente testados. Em uma tentativa realizada para alocar as espécies neotropicais,

esses caracteres mostraram-se inconsistentes.

Espécimens examinados pertencem às seguintes instituições: INPA, Instituto

Nacional de Pesquisas da Amazônia, Manaus, C. Magalhães; MCN, Museu de Ciências

Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre; MCP, Museu de

Ciências, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, A.A.

Lise; MCZ, Museum of Comparative Zoology, Cambridge, Mass., H.W. Levi; MHCI,

Museu de História Natural “Capão da Imbuia”, Curitiba, M. Braga; MZSP, Museu de

Zoologia, Universidade de São Paulo, J.L.M. Leme; SMNK, Staatliches Museum fiir

Naturkunde, Karlsruhe, H. Hófer.

Abreviaturas utilizadas no texto seguem MARQUES & BUCKUP (1993).

Medidas em milímetros.

Achaearanea triguttata (Keyserling), comb. n.

(Figs. 1,2,9)

Theridium triguttatum KEYSERLING, 1891:190, est.6, figs.136, 136a, 4 sintipos fêmeas, Nova Friburgo,

Rio de Janeiro e Espírito Santo, Brasil; GÖLDI, 1892:224, 233; BONNET, 1959:4545.

Theridion triguttatum; PETRUNKEVITCH, 1911:208; ROEWER, 1942:499; MELLO-LEITÃO, 1943:171;

LEVE 1963d:542 fies. 76, 77:21967525:

Nota. A espécie era conhecida só por fêmeas. Espécimens de ambos os sexos,

colecionados juntos, em várias localidades do sul do Brasil, compartilham o mesmo

padrão de colorido do corpo. A estrutura do palpo do macho mostra que a espécie estava

mal posicionada em Theridion.

Macho ( Rio Grande do Sul, MCN 6271). Carapaça e quelíceras amarelo-

alaranjadas; região ocular pigmentada de preto; coxas e esterno amarelo-claros; pernas

amarelo-claras, exceto fêmures amarelo-alaranjados, todos os segmentos levemente

pigmentados de cinza. Abdômen oval, amarelo-acinzentado, dorsalmente, com um par,

anterior, de manchas pretas e uma mancha mediana no topo do abdômen (fig. 1); ventre

com pigmento preto em pequena área anterior ao sulco epigástrico e nas fiandeiras

anteriores. Olhos subiguais; OMA, maiores, afastados entre si pela metade do seu

diâmetro, muito próximos aos OLA. OMP separados um do outro por pouco mais do

que seu diâmetro e por quase um diâmetro e meio dos OLP.

Diagnose. O palpo do macho assemelha-se ao de A. pallipera Levi, 1963 (LEVI

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições, transferências e novas sinonímias... 47

1963c, fig. 49), mas distingue-se pela forma do êmbolo e padrão de colorido do abdômen

(fies. 1,2,9).

Medidas. Comprimento total 2,07. Carapaca comprimento 0,95, largura 0,85.

Abdômen comprimento 1,10; largura 0,80. Pernas 1,4,2,3. Comprimento Y/I/II//IV:

fêmures 1,55/1,02/0,75/ 1,12; patelas-tíbias 1,50/0,97/0,70/1,00; metatarsos 1,22/0,77/

0,55/0,72; tarsos 0,67/0,50/0,42/ 0,47. Comprimento total das pernas: 4,94/3,26/

2495,31.

Material examinado. BRASIL. Rio de Janeiro: Angra dos Reis, Ilha Grande, Ponta da Aripeba, 2

S, 13-16.X1.1993, A.B. Bonaldo col. (MCN 24904); Paraná: Jundiaí do Sul, S', 19.1.1987, Equipe Profaupar

col. (MCN 20164):9,23.X1.1987, A.D. Brescovit col. (MCN 17170); Capitão Leônidas Marques, Salto Caxias,

25 , 20-28.111.1993, A.B. Bonaldo col. (MCN 23262); Foz do Iguaçu, Parque Nacional do Iguaçu, 25 ,9,29-

30.11.1993, A.B. Bonaldo col. (MCN 23237); Rio Grande do Sul: Iraí, 9, 21.X1.1975, A.A. Lise col. (MCN

12215); Barra do Ouro, S,9, 05.1.1985, A.A. Lise col. (MCN 13229); Campo Bom, 2, 12.X.1980, C.J.

Becker col. (MCN 9375); 9, 25.V11.1986, C.J. Becker col. (MCN 19641); 25, 14.X11.1987,C.J. Becker col.

(MCN 19503); Montenegro, 2 2 , 07.VI1.1977, M.L. Tavares col. (MCN 6161); 94,79, 11.VH1.1977, AA.

Lise col. (MCN 6271); S, 06.X.1977, H. Bischoff col. (MCN 6772); 6, 69,01.XI1.1977, H.A. Gastal col.

(MCN 7425); Novo Hamburgo, S , 11.XII. 1984, C.J. Becker col. (MCN 12651); 9,29, 28.VI1.1986, CJ.

Becker col. (MCN 15458); São Leopoldo, 9, 24.1X.1978, C.J. Becker col. (MCN 8210); 2, 27.XI1.1982, CJ.

Becker col. (MCN 11383); Viamão, Itapuã, 2 6,9, 19.1.1977, M.L. Tavares, E.H. Buckup col. (MCN 5291,

5698); Parque Saint Hilaire, & , 23.1.1973, A.A. Lise col. (MCN 11992); 2, 30.1V.1976, A.A. Lise col. (MCN

4173); 29, 07.V.1976, M.L. Tavares col. (MCN 4258); Porto Alegre, 26,29, 15.XI1.1989, A.A. Lise col.

(MCN 19171).

Distribuição. Sudeste (Espírito Santo e Rio de Janeiro) e sul do Brasil.

Anelosimus decoloratus (Keyserling), comb. n.

(Figs. 3,4,10)

Theridium decoloratum KEYSERLING, 1886:234, est.20, figs. 289, 289a, holótipo fêmea, Blumenau, Santa

Catarina, Brasil; BONNET, 1959:4464.

Theridion decoloratum; PETRUNKEVITCH, 1911:193; ROEWER, 1942:491; LEVI, 1963d:562, figs. 154,155.

Nota. LEVI (1963d), ao revisar o gênero Theridion, comentou que a espécie

poderia não pertencer ao gênero. Nos espécimens examinados, constatamos cólulo com

duas cerdas, difícil de ser observado; os três dentes na promargem e cinco na retromargem

das quelíceras e a estrutura do palpo do macho indicam que a espécie pertence ao gênero

Anelosimus, conforme os caracteres mencionados por LEVI (1963a).

Macho (Rio Grande do Sul, MCN 16889). Cefalotórax e apêndices amarelo-

claros; abdômen cinza-claro. Olhos subiguais; OMA ligeiramente maiores que os demais,

distantes um do outro por quase seu diâmetro e dos OLA por cerca de seu raio. Olhos

posteriores, eqüidistantes, afastados um do outro por cerca de um diâmetro e meio dos

OMP.

Diagnose. O palpo do macho assemelha-se ao de Anelosimus roseus

(Nicolet,1849) (LEVI, 1963a, figs. 8, 9), do qual separa-se pelo ápice do címbio recortado,

por detalhes do êmbolo e do condutor e pela apófise tegular de Theridiidae, com ápice

bipartido (figs. 3, 4, 10).

Variação. A posição do êmbolo varia nos palpos examinados, como LEVI

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

48 BUCKUP & MARQUES

(1963a) observou em A. roseus.

Medidas. Comprimento total 2,37. Carapaça comprimento 1,12, largura 0,97.

Abdômen comprimento 1,25, largura 1,20. Pernas 1,2,4,3. Comprimento I/I/AI/IV:

fêmures 1,32/0,97/0,72/ 0,95; patelas-tíbias 1,42/1,02/0,72/0,97; metatarsos 0,95/0,70/

0,55/0,67; tarsos 0,55/0,42/0,35/ 0,40. Comprimento total das pernas: 4,24/3,11/2,34/

2,99.

Material examinado. BRASIL.Paraná: Guatupe, 36 ,9,03.X.1967, E. Rosal col. (MHCI 3935/1);

Rio Grande do Sul: São Valentim, 9, 16.X.1976, S. Scherer col. (MCN 4758); Cambará do Sul, &', 09.1.1976,

A.A. Lise col. (MCN 4071); 2 9, 15.1.1978, PC. Braun col. (MCN 15584); S, 22.V1.1987, A.A. Lise col.

(MCN 16889); Area de Preservação Ambiental Celulose Cambará, S ,9, 11-13.1V.1994, M.A.L. Marques col.

(MCN 25462); 2 , 31.VII.1994, N. Silveira col. (MCN 25762); Caxias do Sul, 9,2 9, 15.X1.1976, E.H.

Buckup col. (MCN 4584, 4575, 4593); Canela, S , 03.11.1970, A.A. Lise col. (MCN 481); 92, 05.11.1976, A.

Ximenez col. (MCN 4039); 9, 21.1X.1984, M. Hoffmann col. (MCN 12360); 9, 03.1X.1988, A.B. Bonaldo

col. (MCN 17830); Rio Pardo, 9, 10.11.1969, A.A. Lise col. (MCN 11994).

Distribuição. Sul do Brasil.

Chrysso rubrovittata ( Keyserling)

(Fig. 11)

Faiditus rubrovittatus KEYSERLING, 1884:159, est.7, figs.98, 98a-d, holótipo fêmea, localidade-tipo

desconhecida; provavelmente América do Sul, segundo LEVI (1962); BONNET, 1956:1895.

Chrysso perplexa KEYSERLING, 1886:242, est.20, fig.296, holótipo macho, Blumenau, Santa Catarina, Brasil;

BONNET, 1956:1085; LEVI, 1962:220, fig.18; PLATNICK, 1993:195. Syn.n.

Theridion rubrovittatum; PETRUNKEVITCH, 1911:205; ROEWER, 1942:498.

Theridion perplexum; PETRUNKEVITCH, 1911:202; ROEWER, 1942:496.

Faiditus lacteovittatus MELLO-LEITÃO, 1945:233, fig. 7, holótipo fêmea, Puerto Victoria, Misiones, Argentina;

LEVI, 1962:218 (= Chrysso rubrovittata ); BRIGNOLI, 1983:385.

Chrysso rubrovittata ; LEVI, 1962:218, figs. 14-17; PLATNICK, 1993:195.

Nota. Com base em amplo material do sul do Brasil, verificamos que Chrysso

perplexa é o macho de C. rubrovittata (palpo, fig. 11).

Material examinado. BRASIL. Paraná: Foz do Iguaçu, Refúgio Biológico de Bela Vista, 29,

17.11.1991, A.B. Bonaldo col. (MCN 20910, 20912); 3 5,3 9, 09-11.X1.1991, A.B. Bonaldo col. (MCN

21632); 2, 17.X1.1991, Al. Lara col. (MCN 21846). Santa Catarina: Siderópolis, S , 06.XI.1977, ER.

Meyer col. (MCN 7763); Rio Grande do Sul: Nonoai, S', 13.1.1985, A.A. Lise col. (MCN 13052); Tenente

Portela, 2 6,9 ,11.1X.1976, S. Scherer col. (MCN 4644, 4646); São Valentim, 9 , 16.X.1976, S. Scherer col.

(MCN 4788); Vacaria, S ,9, 21.11.1975, M. Araújo col. (MCN 2806); Caxias do Sul, Vila Oliva, S , 14.1X.1976,

C.J. Becker col. (MCN 4519); Campo Bom, <' , 04.11.1985, C.J. Becker col. (MCN 13124); Montenegro, 26,

39,05.V.1977,49,07.VH.1977,106,119,11.VH1.1977,265,39,06.X.1977,5,29,03.X11977,0,9,

01.X11.1977,2 6, 15.XH.1977, A.A. Lise, E.H. Buckup, H. Bischoff, H.A. Gastal, M.H. Galileo col. (MCN

5355, 5358, 5360, 5372, 6132, 6273, 6274, 6291, 6774, 6778, 6849, 7168, 7172, 7432, 7436, 7573); Santa

Cruz do Sul, 656,39, 31.VIII.1974, A.A. Lise col. (MCN 2347, 2375); Santa Maria, OS , 02.X1.1985, A.D.

Brescovit col. (MCN 14613); São Leopoldo, S ,9, 12.VII.1992, A.C. Meyer col. (MCN 24746); Gravataí, O,

03.11.1985, A.A. Lise col. (MCN 13196); Triunfo, S , 9, 02.V1.1977,49,592, 151X.1977,S, 291X.1977,

117,112, 20,27.X.1977, A.A. Lise, E.H. Buckup, H. Bischoff, M.H. Galileo col. (MCN 5709, 5710, 6558,

6562, 6588, 6591, 6677, 6934, 6936, 6948, 7036, 7039); S, 9, 28.X1.1977, H. Bischoff col. (MCN 7351,

7352); $,9, 15.X.1980, E.H. Buckup col. (MCN 9263); 0,22, 12.V.1981, E.H. Buckup col. (MCN 9672,

9675); S, 30.X1.1987, M.A.L. Marques col. (MCN 17058); 2 &, 92, 21.1X.1989, E.H. Buckup col. (MCN

18670); S , 24.X.1989, E.H. Buckup col. (MCN 18847); 2 ,28.X1.1989, M.H. Galileo col. (MCN 19039); 9,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições, transferências e novas sinonímias... 49

25.V.1990, L. Moura col. (MCN 19677); 5 3,4 9, 11.1X.1992, M.A.L. Marques col. (MCN 22377); O,

23.V1.1993, M. Hoffmann col. (MCN 23701);5,29,18.X. 1993, L. Moura col. (MCN 24820); 6, 13.1.1994,

L. Moura col. (MCN 24777); Viamão, S', ?, 04.V.1975, A.A. Lise col. (MCN 4058, 4059); 2 6,29,

17.1X.1976, E.H. Buckup, M.L. Tavares col. (MCN 4545, 4549, 4556, 4590); 3 © , 06, 24.1.1977, A.A. Lise

col. (MCN 5167, 5772); 29, 05.X.1978, A.A. Lise col. (MCN 8225); 2 , 13.1X.1984, A.A. Lise col. (MCN

12314); , 30.X1.1984, E.H. Buckup col. (MCN 12598); 6,9, 25.VII.1985, A.A. Lise col. (MCN 13371); 9,

18.X.1985, A.D. Brescovit col. (MCN 14480); Guaíba, S , 12.1.1989, A.D. Brescovit col. (MCN 18494);

Sertão Santana, S', 26.1.1977, E.H. Buckup col. (MCN 5262); Pelotas, 8 9, 25, 27.IX.1975, A.A. Lise col.

(MCN 4035, 12157); Rio Grande, Estação Ecológica do Taim, 4 S,6 9, 10-28.X.1985, AA. Lise, E.H.

Buckup, C.J. Becker, H.A. Gastal col. (MCN 13588, 13610, 13652, 13706, 13783, 13837, 13935); 46,39,

28.X1.1985, M. Rosenau, M.A.L. Marques col. (MCN 13910, 13919); 2 9,8 2, 08,10.1V.1986, A.A. Lise,

E.H. Buckup, M.A.L. Marques col. (MCN 14725, 14734, 14741, 14747); 406 ,21 2 , 01,02.IX.1986, A.A.

Lise, E.H. Buckup, H.A. Gastal, M.A.L. Marques, M. Rosenau col. (MCN 15784, 15792, 15794, 15797, 15807,

15816, 15822, 15841); 6,9, 04.X1.1986, E.H. Buckup, M.A.L. Marques col. (MCN 15964, 15983); 245,8

2, 02,04.X11.1986, A.D. Brescovit, E.H. Buckup, M.A.L. Marques, M. Rosenau col. (MCN 16102, 16118,

16170, 16178, 16200, 16216, 16276).

Distribuição. Brasil (Pernambuco, Minas Gerais (LEVI, 1962), Paraná, Santa

Catarina e Rio Grande do Sul) e Argentina (Misiones).

e A ER

Figs. 1-8. Achaearanea triguttata (Keyserling), macho: |, abdômen, lateral; 2, palpo, ventral. Anelosimus

decoloratus (Keyserling), macho, palpo: 3, ventral; 4, prolateral. Chrysso sulcata (Keyserling), fêmea: 5,

abdômen, lateral; 6, dorsal; 7, epígino, ventral; 8, dorsal, clarificado. (ATT, apófise tegular de Theridiidae; C,

condutor; E, êmbolo). Escalas: 0,Imm, figs. 2-4, 7,8; 0,5mm, figs. 1,5, 6.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

50 BUCKUP & MARQUES

Chrysso sulcata (Keyserling)

(Figs. 5-8, 12)

Helvibis sulcata KEY SERLING, 1884: 175, est.8, figs.106, 106a, b, holótipo macho, Amazonas, Brasil.

Chrysso sulcata; KEY SERLING, 1886:243; 1891:207; GÖLDI, 1892:224; LEVI, 1955:67, fig.13; 1962:211

(chave); BONNET, 1956:1085; PLATNICK, 1993:195.

Theridion sulcatum; PETRUNKEVITCH, 1911:207; ROEWER, 1942:499.

Nota. Machos (palpo, fig.12) e fêmeas, com padrão de colorido semelhante,

foram coletados juntos em várias localidades do Brasil.

Fêmea (Paraná, MCN 21630). Carapaça e quelíceras amarelo-claras; área dos

olhos anteriores, parte do clípeo (faixa transversal) e cômoros oculares dos olhos laterais

pigmentados de preto. Pernas amarelo-claras, exceto ápice dos metatarsos e tarsos,

escurecidos. Esterno amarelo na metade anterior e pigmentado de preto na posterior.

Abdômen cinza-claro, com faixas mediano-longitudinal e duas laterais, uma de cada

lado, com grandes manchas brancas; duas manchas pretas, anteriores, e uma posterior na

ponta do abdômen (figs. 5, 6). Olhos médios anteriores, maiores do que os demais;

OMA separados um do outro por cerca de um diâmetro e dos OLA por quase um terço

do seu diâmetro. Olhos posteriores equidistantes; OMP distantes entre si e dos OLA por

quase seu diâmetro.

Diagnose. Fêmeas de C. sulcata distinguem-se pela forma do epígino (figs. 7,8)

semelhante a de C. diplosticha Chamberlin & Ivie, 1936, porém com genitália interna,

distinta, parecida com a de €. albomaculata O. Pickard-Cambridge, 1882 (vide LEVI,

1955:78 „üss.25. 26-81;

Medidas. Comprimento total 3,15.Carapaça comprimento 1,10, largura 0,80.

Abdômen comprimento 2,17, largura 1,10. Pernas 1,2,4,3. Comprimento I/I/IH/TV:

fêmures 2,32/1,47/0,82/1,52; patelas-tíbias 2,35/1,32/0,70/1,30; metatarsos 1,90/1,02/

0,52/1,00; tarsos 0,67/0,52/0,35/0,47. Comprimento total das pernas: 7,24/4,33/2,39/

4,29.

Material examinado. BRASIL. Amazonas: Presidente Figueiredo, Balbina, Serra do Chocador, & ,

29,31.V.1994, H. Höfer & J. Walker col. (MCN 25753). Tocantins: Palmas, Chácara São Joaquim, 9,2%,

15.XI. 1992, A.M. Ferreira col. (MCN 22564); Paraná: Santa Helena, Refúgio Biológico de Santa Helena, 9,

21.11.1991, A.B. Bonaldo col. (MCN 20928); 5,29, 12-16.X1.1991, A.B. Bonaldo col. (MCN 21831); Foz

do Iguaçu, Refúgio Biológico de Boa Vista, 17 5,199, 7.1 E A.B. Bonaldo col. (MCN 20909); 106,

21 2,09-11.X1.1991, A.B. Bonaldo col. (MCN 21630). BOLIVIA. Beni: Estaciön Biológica del Beni, &', 29,

21.V11.1993, A.D. Brescovit col. (MCN 24197, 24198).

Distribuição. Peru (LEVI, 1955). Do norte (Amazonas, Pará e Tocantins) ao sul

(Paraná) do Brasil. Bolívia (Beni).

Dipoena cordiformis Keyserling

(Fig. 13)

Dipoena cordiformis KEYSERLING, 1886:259, est.21, figs.307, 307a,b, macho, Blumenau, Santa Catarina,

Brasil; PETRUNKEVITCH, 1911:173; ROEWER, 1942:423; BONNET, 1956:1505; LEVI, 1963b:175,

fig. 244.

Dipoena copiosa LEVI, 1953:3, figs. 14,15,27,28, fêmea, San José, Costa Rica; 1963b:175; figs. 245-247;

BRIGNOLI, 1983:401. Syn. n.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições, transferências e novas sinonímias... 51

Figs. 9-12. Machos, palpo, ventral: 9, Achaearanea triguttata (Keyserling). 10, Anelosimus decoloratus

(Keyserling), &mbolo e condutor deslocados da posição original. 11, Chrysso rubrovittata

(Keyserling). 12, C. sulcata (Keyserling).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

52 BUCKUP & MARQUES

Sinonimia. Nas colecöes examinadas, foram encontrados machos (palpo, fig.13)

e fêmeas colecionados juntos, com mesmo padrão de colorido e respectiva variação.

Variação. O colorido do dorso do abdômen, tanto de machos como de fêmeas,

varia desde duas áreas laterais anteriores e uma mediana posterior claras, despigmentadas,

até o totalmente preto. Esterno e ventre variam do amarelo-claro ao leve ou fortemente

pigmentado de preto.

Material examinado. BRASIL. Roraima: Ilha de Maracá, Rio Uraricoera, S , 21-23.X1.1987,J.A.

Rafael col. (MCN 26529);5', 24.11.1987, A.A. Lise col. (MCN 26634). Amazonas: Ilha da Marchantaria, Rio

Solimões (59º 58'W- 3°15’S), 3 6,29, 03.X1.1987, H. Höfer col. (SMNK); 2, 12.X11.1987, H. Höfer col.

(INPA ex SMNK); S, 14.1X.1987, H. Höfer col. (SMNK); <', 16.XI1.1987, H. Höfer col. (INPA ex SMNK); 2

OS ,9, 17.X1.1987, H. Höfer col. (SMNK); Manaus, Reserva Ducke, 2, 17.X11.1973, L.P. Albuquerque col.

(INPA); S, 28.V.1973, L.P. Albuquerque col. (INPA); 9, 26.V11.1973, L.P. Albuquerque col. (MCN 26528);

Reserva Campina, & , 25.1V.1973, L.P. Albuquerque col. (MCN 26530). Paraná: Capitão Leonidas Marques,

Salto Caxias, ?, 20-28.111.1993, A.B. Bonaldo col. (MCN 23246); Foz do Iguaçu, Refúgio Biológico de Bela

Vista, 2, 17.11.1991, A.B. Bonaldo col. (MCN 20904); 92, 09-11.X1I.1991, A.B. Bonaldo col. (MCN 21682);

Foz do Iguaçu, Parque Nacional do Iguaçu, S', 29-30.111.1993, A.B. Bonaldo col. (MCN 23328). Rio Grande

do Sul: Tenente Portela, Parque Estatual do Turvo, Salto Yucumã, 9, 16.1.1985, A.A. Lise col. (MCN 12868);

Canela, & , 21.1X.1984, A.A. Lise col. (MCN 12366).

Distribuição. Costa Rica, Panamá (LEVI,1953) e Brasil (Roraima, Amazonas,

São Paulo, Paraná, Santa Catarina e Rio Grande do Sul).

Dipoena ira Levi

(Fig. 14)

Dipoena ira LEVI, 1963b:173, figs. 235-237, holótipo e dois parätipos fêmeas, Nova Teutônia, Santa Catarina,

Brasil; BRIGNOLI, 1983:402.

Dipoena foliata; LEVI, 1963b:181, partim, macho, figs. 295, 296 (non fêmea =D. foliata Keyserling, 1886).

Nota. LEVI (1963b) apresentou o macho de D. foliata, com base em espécimens

coletados por F. Plaumann, em Nova Teutônia, Santa Catarina. Aquele macho seguramente

não é coespecífico com D. foliata. A série de exemplares examinada de D. ira mostra

que tanto machos (palpo, fig. 14) quanto fêmeas têm o mesmo padrão de colorido do

abdômen, diferente do de D. foliata, ilustrado por KEYSERLING (1886: fig. 308). Nas

coleções do MCN também se encontram fêmeas desta última espécie.

Material examinado. BRASIL.Paraná: Guarapuava,9, 22.X1.1987, A.B. Bonaldo col. (MCN 17123).

Rio Grande do Sul: Vacaria, S,29,21.1V.1982, A.A. Lise col. (MCN 10231); São Borja, © , 07.XI1.1975,

A.A, Lise col. (MCN 9407); Caxias do Sul, Vila Oliva,9, 05.1.1976, P.A. Buckup col. (MCN 4028); Farroupilha,

26 ,291X.1978, H. Bischoff col. (MCN 8324); Montenegro, 9, 11.VIII.1977, A.A. Lise col. (MCN 6256);

Triunfo, 2 , 19.V.1977, E.H. Buckup col. (MCN 5439); 9, 30.X1.1987, M.A.L. Marques col. (MCN 17070); 9,

12.1.1989, M.A.L. Marques col. (MCN 18045);S, 12.V1.1991, M.H. Galileo col. (MCN 21185):;9, 11.1X.1992,

M.A.L. Marques col. (MCN 22384);9, 17.1X.1993, L. Moura col. (MCN 23961); Canoas,9, 14.XI.1990, E.H.

Buckup col. (MCN 20100);9, 13.XI1.1990, M.A.L. Marques col. (MCN 20128); Sertão Santana, ? , 26.1.1977,

E.H. Buckup col. (MCN 5680); Porto Alegre, S, 9, 18.1.1992, A.B. Bonaldo col. (MCN 21944).

Distribuição. Sul do Brasil (Paraná, Santa Catarina e Rio Grande do Sul).

Dipoena taeniatipes Keyserling

(Figs. 15,16)

Dipoena taeniatipes KEY SERLING, 1891:224, est.9, figs.165, 165a, holótipo fêmea, Rio Grande do Sul,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições. transferências e novas sinonímias... 53

“ABEL

pois

2289181

1082 m

“AGO

17888

: ni

Figs. 13-18. Machos, palpo, ventral: 13, Dipoena cordiformis Keyserling. 14, D. ira Levi. 15, 16, D.

taeniatipes Keyserling (15, subventral). 17, D. tingo Levi. 18, D. variabilis (Keyserling).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

54 BUCKUP & MARQUES

Brasil; PETRUNKEVITCH, 1911:174; ROEWER, 1942:423; MELLO-LEITÄO,1943:166; BONNET,

1956:1513; LEVI, 1963b:154, figs. 87-89.

Dipoena itu LEVI, 1963b:181, figs. 297,298, holótipo macho, Itá, São Paulo, Brasil; BRIGNOLI,1983:402.

Syn. n.

Sinonímia. Dipoena itu é o macho de D. taeniatipes; machos (palpo, figs. 15,16)

e fêmeas têm o mesmo padrão de abdômen e foram coletados juntos.

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: Torres, © , 30.1V.1993, L. Moura col. (MCN

23625); Santa Maria, © , 09.VI1.1982, M. Rosenau col. (MCN 10545); Montenegro, 2, 29.IX.1977, E.H.

Buckup col. (MCN 6667); General Câmara, 9, 16.1X.1982, A.A. Lise col. (MCN 10729); Triunfo,9, 15.1X.1977,

E.H. Buckup col. (MCN 6547); Guaíba, © ,13.V1I1.1989, A.B. Bonaldo col. (MCN 18591); S, 17.1X.1989,

A.B. Bonaldo col. (MCN 18633); Porto Alegre, Morro Santana, S, 9, 17.V.1980, A.A. Lise col. (MCN 9071,

9077); 2, 16.V.1981, A.A. Lise col. ( MCN 9743).

Distribuição. Sudeste e sul do Brasil (São Paulo, Santa Catarina e Rio Grande

do Sul).

Dipoena tingo Levi

(Fig. 17)

Dipoena tingo LEVI, 1963b:180, figs. 285-287, holótipo fêmea, Tingo María, Huánaco, Peru; BRIGNOLI,

1983:403.

Dipoena inca LEVI, 1963b:182, figs.299-301, holötipo macho, Monzön Valley, Tingo Maria,Huänaco, Peru;

BRIGNOLI, 1983: 401. Syn. n.

Sinonímia. LEVI (1963b) propôs D. tingo, com base em única fêmea coletada,

em 1947, em Tingo María e D. inca sobre macho de Monzón Valley, Tingo María, Peru,

em 1954. Machos (palpo, fig.17) e fêmeas, coligidos na Ilha de Maracá, mostram que D.

inca é o macho de D. tingo.

Material examinado. BRASIL. Roraima: Ilha de Maracá, Rio Uraricoera, S,9, 24.11.1987, A.A. Lise

col. (MCN 21581); 9, 25.11.1987, A.A. Lise col. (MCN 21582); 6,92, 17.V1.1987, A.A, Lise col. (INPA); 2

S,9,18.VI. 1987, A.A. Lise col. (INPA); 9, 20.VI1.1987, A.A. Lise col. (INPA); S , 25.VII. 1987, A.A. Lise

col. (INPA); 26,29, 04.X11.1987, A.A. Lise col. (MCN 21583); 2, 07.XI1.1987, E.H. Buckup col. (MCN

21584).

Distribuição. Peru (Tingo María) e Brasil (Roraima).

Dipoena variabilis (Keyserling)

(Fig. 18)

Euryopis variabilis KEY SERLING, 1886:262, figs. 310, 310a-c, sintipos fêmea e macho,Blumenau, Santa

Catarina, Brasil; PETRUNKEVITCH, 1911:178; ROEWER, 1942:454; BONNET, 1956:1828.

Dipoena variabilis; LEVI, 1963b:167, fêmea figs. 185, 186.

Dipoena sicki LEVI, 1963b:176, figs.248,249, holótipo macho, Rio de Janeiro, Brasil; BRIGNOLI,1983:403.

Syn. n.

Dipoenata sicki; WUNDERLICH, 1988:156; PLATNICK, 1993:200.

Sinonímia. Machos (palpo, fig. 18) e fêmeas compartilham o mesmo padrão de

colorido do abdômen, mostrando significativas evidências que são da mesma espécie.

Nota. Dipoena sicki, transferida para Dipoenata, por WUNDERLICH

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições, transferências e novas sinonímias... 55

(1988:156), não apresenta três dos cinco caracteres genéricos por ele relacionados para

Dipoenata (WUNDERLICH, 1988:149). A espécie tem cerdas tibiais dorsais 2/2/1/2,

quelíceras longas, tanto em machos como nas fêmeas, e olhos médios anteriores e

posteriores aproximadamente iguais em tamanho, pouco maiores que os laterais. Em

Dipoenata, cerdas tibiais 1/1/1/1, quelíceras muito curtas e olhos médios anteriores

maiores que os demais.

Variação. Carapaça e esterno variam do amarelo-claro a leve ou fortemente

pigmentado de preto. O colorido do dorso do abdômen, semelhante aqueles figurados

por KEYSERLING (1886, figs. 310, 310b), pode apresentar maior área de pigmento

preto.

Material examinado. BRASIL. Paraná: Rio Branco do Sul,? , 16.1V.1987, A.D. Brescovit col.

(MCN 17150); Guarapuava, 9, 22.XI.1987, A.D. Brescovit col. (MCN 17124); Curitiba, Q , 10.1V.1987, A.D.

Brescovit col. (MCN 16730); Três Barras do Paraná, O , 27.11.1993, A.B. Bonaldo col. (MCN 23218). Santa

Catarina: Rancho Queimado, & , 13-15.1.1995, A.B. Bonaldo col. (MCN 26410). Rio Grande do Sul: Nonoai,

O, 14.1.1985, A.A. Lise col. (MCN 12830); Vacaria, 29, 25.1V.1982, A.A. Lise col. (MCN 21854); Farroupilha,

S , 12.1X.1978, C.J. Becker col. (MCN 8198), 29, 29.1X.1978, H. Bischoff col. (MCN 8325); Montenegro, 9,

29. 1X.1977, A.A. Lise col. (MCN 6668); General Câmara, 2, 19.X.1982, E.H. Buckup col. (MCN 10912);

Guaíba, & , 10.VI1.1988, A.B. Bonaldo col. (MCN 17778); Porto Alegre, 2, 02.1V.1985, A.A. Lise col. (MCN

9636).

Distribuição. Brasil (Minas Gerais, Rio de Janeiro, Paraná, Santa Catarina e

Rio Grande do Sul).

Theridion leguiai Chamberlin, comb. rev.

(Figs. 19,20)

Theridion leguiai CHAMBERLIN, 1916:229, pl.15, figs. 7-10, holótipo fêmea, Rio Conservidayoc,

Cuzco, Peru; ROEWER, 1942:494.

Theridium leguiai; BONNET, 1959:4484.

Achaearanea leguiai; LEVI, 1963c:221, figs. 55,56; PLATNICK, 1993:183.

Nota. A espécie era conhecida apenas por fêmeas; macho e fêmea foram

coletados juntos em teia.

Macho (Calí, MCZ). Carapaça amarelo-clara, com uma faixa mediana em “V”

pigmentada de cinza que se estende até a fóvea torácica; clípeo pigmentado de cinza.

Quelíceras amarelo-alaranjadas; lábio e enditos amarelo-claros. Esterno amarelo-claro

pigmentado de cinza, com alguns pontos marginais mais escuros. Pernas amarelo-claras

pigmentadas de cinza. Abdômen, subesférico, cinza-amarelado, dorsalmente manchado

de preto, exceto em faixas paramedianas longitudinais e transversais descendentes que

podem conter pigmento branco; posteriormente, uma linha longitudinal interrompida de

pigmento branco. Ventre cinza-amarelado, com uma faixa mediana longitudinal

pigmentada de preto, desde a área epigástrica até as fiandeiras; no meio do ventre, uma

mancha circular, cinza-amarelada, com um ponto branco. Olhos subiguais; OMA

separados entre si por três quartos de seu diâmetro e dos laterais por um terço. Olhos

posteriores egiiidistantes, separados um do outro por pouco mais do que o diâmetro dos

OMP.

Diagnose. T. leguiai distingue-se facilmente das outras espécies pela forma do

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

56 BUCKUP & MARQUES

palpo do macho (figs. 19, 20); a base do êmbolo, longa, com um lóbulo anterior.

Medidas. Comprimento total 3,30. Carapaça comprimento 1,50, largura 1,40.

Abdômen comprimento 1,75, largura 1,52. Pernas, provavelmente 1,2,4,3 (tíbias II,

partidas). Comprimento I/I/II/IV: fêmures 2,50/1,95/1,40/1,85; patela-tíbia 3,00/ - /

1,30/1,90; metatarsos 2,55/1,80/1,25/ 1,55; tarsos 0,95/0,70/ 0,60/0,70. Comprimento

total das pernas: 9,00/ - /4,55/6,00.

Material examinado. COLÔMBIA. Antioquia: El Pefol (950 m altitude), 2, 02.V.1973, Leist col.

(MCN 27538). Valle : Calí (1000m altitude), © , 9, 01.11.1973, H. Levi col. (MCZ); 6 Km SW de Calí

(1300m), 2 ‚05.11.1973, W. Eberhard & H. Levi col. (MCZ).

Distribuição. Peru (Cuzco); Colômbia (Calí, Antioquia).

Theridion orgea (Levi), comb. n.

(tes 271722227728)

Achaearanea orgea Levi, 1967:23, figs.5,6, holötipo fêmea, Serra dos Órgãos, Rio de Janeiro, Brasil;

BRIGNOLI, 1983:391.

Nota. LEVI (1967), ao descrever Achaearanea orgea, comentou que a espécie

poderia pertencer ao gênero Theridion, uma vez que fêmeas desses dois gêneros, sem a

presença de machos, são difíceis de posicionar corretamente em gêneros. Machos e fêmeas

foram coligidos juntos, ambos têm o mesmo padrão de abdômen.

Macho (Rio Grande do Sul, MCN 6349). Carapaça amarela, levemente

pigmentada de cinza em uma área mediana em “V”, cujo vértice atinge a fóvea; clípeo e

laterais torácicas ligeiramente pigmentadas de cinza. Pernas, quelíceras, lábio e enditos

amarelo-acinzentados. Abdômen manchado de preto, com algumas áreas claras, contendo

pontos de pigmento branco. Olhos médios anteriores maiores do que os demais; OMA

separados entre si por quase seu diâmetro e dos OLA por cerca de um terço de diâmetro.

OMP separados um do outro por seu diâmetro e distantes dos OLP por aproximadamente

dois terços do seu diâmetro.

Diagnose. Machos de T. orgea (figs. 27, 28) separam-se dos de outras espécies

pela forma da base do êmbolo (fig. 21) e presença de um esclerito ponteagudo junto à

ponta anterior da apófise média (fig. 22).

Medidas. Comprimento total 3,30. Carapaça comprimento 1,55, largura 1,40.

Abdômen comprimento 1,90, largura 1,45. Pernas, 1,4,2,3. Comprimento VI/II/TV:

fêmures 2,55/1,87/1,32/1,95; patelas-tíbias 2,75/1,92/1,40/1,97; metatarsos 2,10/1,42/

1,05/1,50; tarsos 1,02/0,80/0,62/ 0,77. Comprimento total das pernas: 8,42/6,01/4,39/

Material examinado. BRASIL. São Paulo: Capão Bonito, Sumidouro, © , 30.X.1955, Vanzolini,

Brandão & D’Horta col. (MZSP 4973); Rio Grande do Sul: Machadinho ( rio Inhandava ou Forquilha), 2,

1989, Equipe PUC col. (MCP 5983); Passo Fundo, 34, 72 ,25.VIIL. 1977, A.A. Lise col. (MCN 6349); Torres,

Colonia São Pedro, ? , 18.1X.1975, A.A. Lise col. (MCN 3650); Triunfo, 9, 25.1.1995, A. Franceschini col.

(MCN 26504); Canoas, Capão do Corvo, 3 9, 23.1V.1966, A.A. Lise col. (MCN 757).

Distribuição. Brasil, do Rio de Janeiro ao Rio Grande do Sul.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições, transferências e novas sinonímias... 57

Figs. 19-26. Theridion leguiai Chamberlin, macho, palpo: 19, ventral; 20, prolateral. T. orgea (Levi),

macho, palpo: 21, ventral; 22, prolateral. T. quadripartitum Keyserling, macho: 23, palpo esquerdo

expandido. Thwaitesia simoni (Keyserling), macho: 24, abdômen, dorsal; 25, palpo, ventral.

Tekellina guaiba Marques & Buckup, fêmea: 26, epígino dorsal, clarificado. (AM, apófise média; E, êmbolo).

Escalas 0,1 mm, figs. 19-23, 25, 26; 0,5 mm, fig. 24.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

58 BUCKUP & MARQUES

Theridion quadripartitum Keyserling, comb. rev.

(Figs. 23,29)

Theridium quadripartitum KEYSERLING, 1891:182, est. 6, figs.127, a, b, síntipos macho e fêmea, Botucatü,

São Paulo, Brasil; GOLDI, 1892:237; BONNET, 1959:4517.

Theridion quadripartitum; PETRUNKEVITCH, 1911:203; ROEWER, 1942:497.

Achaearanea quadripartita; LEVI, 1963c:208, figs. 30-33; PLATNICK, 1993:184.

Nota. O palpo do macho de T. quadripartitum (figs. 23, 29) tem estrutura similar

ao de T. umbilicus Levi, 1963 (LEVI 1963d, figs. 207,208). Em T. quadripartitum, o

êmbolo encontra-se sob um esclerito (condutor?), como em T. umbilicus, e apenas pode

ser visto no palpo distendido (fig. 2 3); apófise média articulada ao tégulo por uma

membrana e címbio com paracímbio alveolar, retrolateral, evidenciam que a espécie

estava mal posicionada em Achaearanea.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Araranguá, Morro dos Conventos, 9, 18.11.1985,

A.D. Brescovit col. (MCN 13155). Rio Grande do Sul: Vacaria, S , 21-25.1V.1982, A.A. Lise col. (MCN

15356); Espumoso, 4 9, 14.1.1982, A.A. Lise col. (MCN 9981); 2, 19.1V.1978, M.H. Galileo col. (MCN

8003); Caxias do Sul, Vila Oliva, 2, 14.1X.1976, E.H. Buckup col. (MCN 4477); 6 ,9, 10.1V.1992, L. Moura

col. (MCN 22135); Farroupilha, © , 2, 29.IX.1978, H. Bischoff, A.A. Lise col. (MCN 8260, 8284); Canela, 2

2, 03.11.1967, A.A. Lise col. (MCN 1403); 49, 03.11.1970, A.A. Lise col. (MCN 482); 2, 21.IX.1974, A.A.

Lise col. (MCN 2227); 2 2, 24.VH1.1975, A.A. Lise col. (MCN 3005); 9, 27.VII.1978, M. Hoffmann col.

(MCN 8181); 20,82 ,01.V11.1984, A.A. Lise col. (MCN 12253); 92, 21.1X.1984, M. Hoffmann col. (MCN

12359); 2 4,2 9, 03.IX.1988, A.B. Bonaldo col. (MCN 17823); Cambará do Sul, Area de Preservação

Ambiental Celulose Cambará, S', 19-21.XII.1994, M.H. Galileo col. (MCN 25998); São Francisco de Paula,

2,231.1981, A.A. Lise col. (MCN 9560); Santa Maria, ? , 08.VII.1982, M. Rosenau col. (MCN 10554); Rio

Pardo, 9, 10.11.1969, A.A. Lise col. (MCN 16063); Porto Alegre, Morro Santana, &', 15.X11.1989, A.A. Lise

col. (MCN 19177).

Distribuição. Sudeste (São Paulo, Minas Gerais) e sul do Brasil (Santa Catarina

e Rio Grande do Sul).

Theridion tinctorium Keyserling

(Fig. 30)

Theridium tinctorium KEYSERLING, 1891:185, est.6, fig. 130, holótipo macho, Rio Grande do Sul, Brasil;

BONNET, 1959:4541.

Theridium querulum KEYSERLING, 1891:186, est.6, figs.131, 131a, holótipo fêmea, Rio Grande do Sul,

Brasil; BONNET, 1959:4518. Syn. n.

Theridion querulum, PETRUNKEVITCH, 1911:204; ROEWER, 1942:499: MELLO-LEITÃO,1943:170;

LEVI, 1963d:566, figs. 182,183.

Theridion tinctorium; PETRUNKEVITCH, 1911:208; ROEWER, 1942:499; MELLO-LEITÃO,1943:171;

LEVI, 1963d:531, fig. 24.

Sinonímia. Significativo número de espécimens, colecionado na Estação

Ecológica do Taim, Rio Grande do Sul, permitiu reconhecer que machos de T. tinctorium

(fig. 30) e fêmeas de T. querulum são da mesma espécie. O colorido da carapaça e esterno

de machos e fêmeas varia do amarelo-claro até parcial ou totalmente pigmentado de

preto e o dorso do abdômen pode apresentar maior quantidade de pigmento branco ou,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições, transferências e novas sinonímias... 59

000215

—188rm

en =, RES

Figs. 27-30. Machos, palpo: Theridion orgea (Levi): 27, ventral; 28, prolateral. T. quadripartitum

Keyserling: 30, ventral. T. tinctorium Keyserling: 30, ventral, êmbolo deslocado da posição

original.

ie it

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

60 BUCKUP & MARQUES

ao contrário, de preto.

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: Machadinho, &, 15.11.1989, A.B. Bonaldo

col. (MCN 18201); Vacaria, 9, 21.111.1975, A.A. Lise col. (MCN 2866); 2S', 23.V.1981, A.A. Lise col. (MCN

9737); Cambará do Sul,9, 16.V1.1983, A.A. Lise col. (MCN 11729); Caxias do Sul, Vila Oliva,?, 14.1X.1976,

M.L. Tavares col. (MCN 4448); 9, 10.1V.1992, L. Moura col. (MCN 22129); Caxias do Sul,S ,9, 05.1X.1976,

E.H. Buckup, M.L. Tavares col. (MCN 4476, 4598): Taquara, S' , 30.11.1974, A.A. Lise col. (MCN 1999);

Triunfo, 2, 19.V.1977, E.H. Buckup col. (MCN 5411); S', 23.1V.1987, M.A.L. Marques col. (MCN 16794); 6,

12.1.1989, A.B. Bonaldo col. (MCN 18074); 35 ,29,28.X1.1989, E.H. Buckup, M.A.L. Marques col. (MCN

19056, 19118); & , 9, 25.1.1990, A.B. Bonaldo col. (MCN 19371); 3 9, 12.V1.1991, L. Moura, M.A.L.

Marques col. (MCN 21165, 21187); 2, 23.X1.1993, F. Mota col. (MCN 23702); Canoas, Capão do Corvo, 9,

23.1V.1966, A.A. Lise col. (MCN 16085); Rio Pardo, 2 9, 10.11.1969, A.A. Lise col. (MCN 1401); Butiá, &,

28.V.1987, A.A. Lise col. (MCN 10397); São Jerônimo, 2 9, 30.1X.1982, J. Pinto col. (MCN 10765); Guaíba,

S , 06.11.1974, A.A. Lise col. (MCN 15949): S, 01.1.1989, A.B. Bonaldo col. (MCN 18011); Sertão Santana,

49, 26.1.1977, M.L. Tavares, A.A. Lise, E.H. Buckup col. (MCN 5622, 5627, 16064); Porto Alegre, 9,

26.11.1966, A.A. Lise col. (MCN 136); Viamão, 9 , 30.11.1977, E.H. Buckup col. (MCN 5300); 29, 06.X.1979,

C.J. Becker col. (MCN 8636); São Sepé, 2, 12.X1.1985, V. Bittencourt col. (MCN 15309); 29, 30.XI1.1987,

C. Kessler col. (MCN 17287); Quaraí, @ , 15.11.1978, J.W. Thomé col. (MCN 7798); S, 02-04.V.1988, A.D.

Brescovit col. (MCN 17446); S , 29.V1.1990, A.D. Brescovit col. (MCN 19732); S , 24-28.V.1991, A.D.

Brescovit col. (MCN 21127); Bagé, 92, 10.11.1967, C. Oliveira col. (MCN 492); Pelotas, 2 , 27.X.1975, AA.

Lise col. (MCN 16702); Rio Grande, Estação Ecológica do Taim, 2, 08.X11.1976, S. Sherer col. (MCN 4922);

6, 01.X.1980, A.A. Lise col. (MCN 9312); 17 5,209, 15-19.X.1985, 660,9, 28.X11985, 16 0, 272, 08-

10.1V.1986, 26 5,31 9, 02-04.XI1.1986, A.A. Lise, A.D. Brescovit, C.J. Becker, E.H. Buckup, H.A. Gastal,

M.A.L. Marques, M. Rosenau col. (MCN 13492, 13516, 13520, 13525, 13534, 13556, 13593, 13594, 13599,

13613, 13614, 13709-13711, 13720, 13753, 13754, 13784, 13786, 13909, 13914, 13939, 13967, 13970, 14715,

14729, 14739, 14746, 14749, 14756, 14757, 14971, 14975, 15007, 15971, 15980, 16104, 16116, 16167,

16175, 16203, 16211, 16260, 16265, 16278); Santa Vitória do Palmar, Estação Ecológica do Taim, 5 & ,89,

26-27.X1.1985,40,59,12.X1.1985, 46, 69,09.1V.1986,S, 02.1X.1986, 49 ,03.XI1.1986, A.A. Lise, E.H.

Buckup, H.A. Gastal, M.A.L. Marques, M.C. Moraes, M. Rosenau col. (MCN 14013, 14014, 14026, 14041,

14057, 14095, 14111-14113, 14185, 14785, 14788, 14792, 14795, 15848, 16336, 16437, 16451).

Distribuição. Brasil (Rio Grande do Sul).

Thwaitesia simoni (Keyserling)

(Figs. 24,25)

Hildbolda simoni KEYSERLING, 1884:157, est.7, figs. 97, 97a-d, holötipo fêmea, “Boston”.

Thwaitesia simoni; PETRUNKEVITCH, 1911:212; ROEWER, 1942:508; BONNET, 1959:4598; LEVI,

1963e:234, figs. 20 ‚21, retificação da localidade-tipo, Belém, Pará, Brasil.

Nota. Machos e fêmeas foram colecionados juntos na Reserva Ducke, Manaus;

ambos têm o mesmo padrão de colorido no abdômen.

Macho (Amazonas, MCN 21418). Carapaça amarela, levemente pigmentada

de cinza em larga área mediano-longitudinal. Pernas amarelas. Quelíceras, lábio, enditos,

coxas e esterno amarelo-claros. Abdômen mais longo que largo; dorso cinza-claro com

pequenas manchas prateadas, exceto na região mediano-longitudinal; duas conspícuas

manchas pretas na região posterior e duas, mais claras, na anterior; laterais com manchas

prateadas; ventre cinza-amarelado, irregularmente manchado de marrom-claro (fig. 24).

Olhos médios anteriores maiores do que os demais; laterais posteriores, os menores.

OMA afastados entre si por cerca de seu diâmetro, próximos dos OLA. OMP separados

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

Descrições, transferências e novas sinonímias... 61

um do outro por aproximadamente seu diâmetro e por três quartos de seu diâmetro dos

OLA.

Diagnose. A espécie distingue-se facilmente das demais pelas duas conspícuas

manchas pretas posteriores, no abdômen (fig. 24). Palpo do macho: fig. 25.

Medidas. Comprimento total 2,30. Carapaça comprimento 0,95, largura 0,85.

Abdômen comprimento 1,40, largura 0,97. Pernas 1,4,2,3. Comprimento /I/IIU/TV:

fêmures 1,87/1,20/0,85/ 1,67; patelas-tíbias 2,07/1,27/0,85/1,82; metatarsos 2,00/1,07/

0,75/1,75; tarsos 0,82/0,60/0,50/0,77. Comprimento total das pernas: 6,76/4,14/2,95/

6,01.

Material examinado. BRASIL. Amazonas: Manaus, Reserva Ducke, S', 28.V.1973, L.P. Albuquerque

col. (MCN 21918); S, 26.VI1.1973, L.P. Albuquerque col. (MCN 21917); 3 9, 03.VT1.1987, A.A. Lise col.

(MCN 21919); 2 2, 04.V1I1.1987, J. Vidal col. (MCN 21920); &, 2, 15-23.VH1.1991, A.D. Brescovit col.

(MCN 21418); 39, 6-9.VIII.1992, A.D. Brescovit col. (MCN 22422).

Distribuição. Norte do Brasil (Amazonas e Pará).

Tekellina guaiba Marques & Buckup

(Fig. 26)

Tekellina guaiba MARQUES & BUCKUP, 1993:127, figs. 5,6, holótipo fêmea, Guaíba, Rio Grande do Sul,

Brasil.

Nota. MARQUES & BUCKUP (1993) descreveram T. guaiba, com base em

única fêmea, não examinando a genitália interna, a qual poderia ser facilmente perdida

devido ao tamanho diminuto dessa estrutura. Entretanto, mais fêmeas foram coletadas, o

que permite apresentar o aspecto dorsal do epígino (fig. 26).

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: São Leopoldo, © , 13.VI1.1992, A.C. Meyer

col. (MCN 24740); Vacaria, ©, 12.X.1994, L. Moura col. (MCN 26251).

Agradecimentos. Aos curadores das coleções examinadas pelo empréstimo de material. Aos

operadores do microscópio eletrônico de varredura do MCN, C.J. Mansan e H. Schneider, pela execução das

fotomicrografias.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BONNET, P. 1956. Bibliographia araneorum; analyse méthodique de toute la littérature araneologique

jusqu’en 1939. Toulouse, Douladore, v. 2, part. 2, p.919-1925.

— . 1959. Bibliographia araneorum; analyse méthodique de toute lalittératurearaneologique

jusqu’en 1939. Toulouse, Douladore, v.2, part.5, p. 4231-5058.

BRIGNOLI, PRM. 1983. A Catalogue of Araneae described between 1940 and 1981. Manchester, Manchester

University. 755p.

CHAMBERLIN,R.V. 1916. Results of the Yale Peruvian Expedition of 1911. The Arachnida. Bull.

Mus. comp. Zool. Harv., Cambridge, Mass., 60(6):177-299.

GÖLDI, E.A. 1892. Zur Orientierung in der Spinnenfauna Brasiliens. Mitt. Osterlande, Altenburg, 5:200-

248.

KEYSERLING, E. 1884. Die Spinnen Amerikas; Theridiidae. Nürnberg, Bauer & Raspe. Bd.2, Hälfte

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

o) BUCKUP & MARQUES

1. 222p.

__. 1886. Die Spinnen Amerikas; Theridiidae. Nürnberg, Bauer & Raspe. Bd.2, Hälfte 2. 295p.

— . 1891. Die Spinnen Amerikas; Brasilianische Spinnen. Nürnberg, Bauer & Raspe. Bd.3. 278p.

LEVI, H.W. 1953. New and rare Dipoena from Mexico and Central America (Araneae, Theridiidae). Am.

Mus. Novitates, New York, (1639):1-11.

— . 1955. The spider genera Chrysso and Tidarren in America (Araneae, Theridiidae).J1 N. Y. ent. Soc.,

NewYork, 63:59-81, 1957.

___. 1962. More American spiders of the genus Chrysso (Araneae, Theridiidae). Psyche, Cambridge, Mass.,

69(4):209-237.

— . 1963a. The American spiders of the genus Anelosimus (Araneae, Theridiidae). Trans. Am. microsc.

Soc., Lancaster, 82(1):30-48.

— . 1963b. American spiders of the genera Audifia, Euryopis and Dipoena (Araneae:Theridiidae). Bull.

Mus. comp. Zool. Harv., Cambridge, Mass., 129(2):125-185.

___. 1963c. American spiders of the genus Achaearanea and the new genus Echinotheridion (Araneae,

Theridiidae). Bull. Mus. comp. Zool. Harv., Cambridge, Mass., 129 (3):187-240.

— . 1963d. American spiders of the genus Theridion (Araneae, Theridiidae). Bull. Mus. comp. Zool. Harv.,

Cambridge, Mass., 129(10):481-589.

___. 1963e. The American spider genera Spintharus and Thwaitesia (Araneae,Theridiidae).Psyche, Cambridge,

Mass., 70(4):223-234.

___. 1967. Habitat observations, records, and new South American Theridiid spiders (Araneae, Theridiidae).

Bull. Mus. comp. Zool., Cambridge, Mass., 136(2):21-37.

MARQUES, M.A.L. & BUCKUP, E.H. 1993. Novas espécies de Tekellina do Brasil (Araneae, Theridiidae).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (74):125-132.

MELLO-LEITÃO, C.F. de. 1943. Catálogo das aranhas do Rio Grande do Sul. Args Mus. nac. Rio de J., Rio

de Janeiro, 37:159-245.

— . 1945. Arafias de Misiones, Corrientes Y Entre Ríos. Revta Mus. La Plata, Nueva Série, La Plata, 4(29):

213-302.

PETRUNKEVITCH, A. 1911. A synonymic index-catalogue of spiders of North, Central and South America

with all adjacent islands, Greenland, Bermuda, West Indies, Terra del Fuego, Galapagos, etc. Bull. Am.

Mus. nat. Hist. , New York, 29:1-791.

PLATNICK, N. 1993. Advances in Spider Taxonomy 1988-1991; with Synonymies and Transfers 1940-

1980. New York, New York Entomological Society, The American Museum of Natural History. 846p.

ROEWER, C.F. 1942. Katalog der Araneae von 1758 bis 1940. Bremen, Verlag von Natura, v.l. 1040p.

WUNDERLICH, J. 1988. Die Fossilen Spinnen im Dominikanischen Bernstein. Straubenhardt, Verlag J.

Wunderlich. 378p.

Recebido em 17.07.1995; aceito em 19.10.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 45-62, 04 out. 1996

DESCRIÇÃO DO SINCRÂNIO DE ARCTOCEPHALUS AUSTRALIS

(PINNIPEDIA, OTARIIDAE)!

César Jaeger Drehmer?

Jorge Ferigolo?

ABSTRACT

SYNCRANIAL DESCRIPTION OFARCTOCEPHALUS AUSTRALIS (PINNIPEDIA, OTARIIDAE).

The general syncranial description of the southern fur seal, Arctocephalus australis (Zimmermann, 1783), one

of the most common pinnipeds of the southern South America coast, is presented. The description of the

characters includes juveniles phases of the ontogenetic development, as well as sexual dimorphism.

KEYWORDS. Pinnipedia, Otariidae, Arctocephalus, description, syncranium.

INTRODUCAO

Muitos autores do Século XIX ocuparam-se com a descrição de espécies de

Arctocephalus G. Saint-Hilaire & Cuvier, 1826. GRAY (1859, 1872) utilizou-se do as-

pecto geral do crânio para diferenciá-las. Entretanto, a valorização de pequenas diferen-

ças o levou ao reconhecimento de aproximadamente 35 espécies, que gerou uma profu-

são de nomes e, consegiientemente, uma confusão nomenclatural que persistiu por mui-

tos anos. REPENNING et al. (1971), consideraram como válida a separação dos gêne-

ros Callorhinus Gray, 1859 e Arctocephalus, e reconheceram apenas 8 espécies: A.

philippii (Peters, 1866), A. townsendi Merriam, 1897, A. galapagoensis Heller, 1904, A.

forsteri (Lesson, 1828), A. gazella (Peters, 1875), A. tropicalis (Gray, 1872), A. australis

(Zimmermann, 1783) e A. pusillus (Schreber, 1776).

1. Parte da dissertação de Mestrado do primeiro autor, Curso de Pós-graduação em Biociências da Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande

do Sul.

2. Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Av. Salvador França, 1427, CEP 90690-000, Porto Alegre, RS, Brasil.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):63-74 , 04 out. 1996

64 DREHMER & FERIGOLO

REPENNING et al. (1971) consideraram os seguintes caracteres como os mais úteis

para a determinação das espécies: (1) comprimento côndilo-basal; (2) comprimento rostral;

(3) largura máxima através dos arcos zigomäticos; (4) largura do palato entre os primei-

ros molares; (5) comprimento do nasal; (6) ângulo facial; e (7) tamanho e padrão dentário.

Cabe ressaltar que os autores admitiram a possibilidade da existência de enorme varia-

ção intra-específica nestes caracteres. BONNER (1981), em sua revisão de Arctocephalus,

apresentou fotografias dos crânios e um quadro comparativo dos principais caracteres

cranianos de todas as espécies reconhecidas por REPENNING et al. (1971).

KING (1954) estudou os Otariidae da costa pacífica da América, baseando-se em

comparações craniométricas, apresentando uma amostra significativa de crânios de A.

australis, incluindo espécimes provenientes das Ilhas Falkand e Galápagos, e das costas

do Chile, Argentina e Uruguai; identificou 3 subespécies de Arctocephalus australis: A.

a. australis (Zimmermann, 1783) para as populações da Ilhas Falkland, A. a. gracilis

Nehring, 1887 para as do continente, e A. a. galapagoensis Heller, 1904 para as das Ilhas

Galápagos. REPENNING et al. (1971), entretanto, atribuíram o status de espécie para a

última. BONNER (1981) lançou dúvidas sobre a validade das demais subespécies, ale-

gando erros de amostragem.

KING (1971) relatou a existência do osso lacrimal em Otariidae, via de Tegra

assinalado erroneamente como ausente em Pinnipedia. Sua amostra incluia 1 espécime

de A. australis. XIMÉNEZ et al. (1984) elaboraram um estudo estatístico de relações

craniometricas de populações de A. australis da costa uruguaia, demonstrando as dife-

renças quantitativas no crânio de machos e fêmeas.

Além dos trabalhos referidos, e das descrições de espécies fósseis, pouco tem

sido publicado sobre osteologia craniana de Arctocephalus. Objetiva-se uma descrição

detalhada do sincrânio de A. australis.

MATERIAL E MÉTODOS

O material utilizado pertence à coleção do Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio

Grande do Sul (MCN), Porto Alegre.

Material examinado. Brasil. Rio Grande do Sul: Tramandaí, 9 jovem, VII.1975, (MCN 247); 9

jovem, VII. 1976, (MCN 533); Palmares do Sul, S adulto 2S' jovens, VIII.1992, C. Drehmer col. (MCN

2495, 2497, 2498); Mostardas, S adulto, 26 jovens, 29 jovens, VII.1992, C. Drehmer col. (MCN 2500, 2501,

2507, 2508, 2509); Santa Vitória do Palmar, s adulto, sem data, E. Martino col. (MCN 1021); 35 adultos, 3 S

jovens,? adulta, IX.1990, J. Ferigolo col. (MCN 2456, 2457, 2461, 2522,2523,2529,2530);S jovem, VIL.1991,

J. Ferigolo col. (MCN 2537).

Para preparação osteológica, cada espécime foi acondicionado em uma caixa de madeira ou em tan-

que de fibro-cimento, coberto com areia, ficando a céu aberto para que se processasse a decomposição das

partes moles. Ao final do período de seis meses a areia foi retirada, peneirada e cada esqueleto foi lavado em

água corrente; posteriormente submerso em peróxido de hidrogênio por 24 horas para clareamento. A descri-

ção segue os padrões nomenclaturais adotados internacionalmente (NOMINA ANATOMICA, 1984).

O dimorfismo sexual no crânio segue o estabelecido por XIMÉNEZ et al. (1984); os termos jovem e

adulto estão baseados no nível de fechamento das principais suturas cranianas, ou seja, no indivíduo jovem as

suturas estão abertas ou em processo de fechamento e nos adultos estão fechadas e fusionadas (ou em processo

de fusão). Os termos Pinnipedia e Pinnipedimorpha são utilizados de acordo com BERTA (1994).

Abreviaturas: (e) ou (d), indicam que a estrutura aparece somente no lado esquerdo ou direito do

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 63-74, 04 out. 1996

Descrição do sincrânio de Arctocephalus australis ... 65

crânio, respectivamente. C/1, canino inferior; I/1, primeiro incisivo inferior; 1/2, segundo incisivo inferior; PC/

1, primeiro pós-canino inferior; PC/2, segundo pós-canino inferior; PC/3, terceiro pós-canino inferior; PC/4,

quarto pós-canino inferior; PC/5, quinto pós-canino inferior; PC5/, quinto pós-canino superior; e PC6/, sexto

pós-canino superior.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Sincrânio de Arctocephalus australis, vista dorsal (fig. 1). Principais acidentes

anatômicos: cristas sagital e nucal externa, constrição pós-orbital, fenestra temporal,

órbita, arco zigomático e orifício nasal externo. A fossa temporal é melhor visível em

vista lateral.

Crista sagital: localizada sobre a linha sagital do crânio, forma-se intimamente

relacionada ao crescimento do músculo temporal (sendo em jovens, continuação das

cristas frontais externas e a rigor cristas para-sagitais). Em fêmeas está pouco desenvol-

vida (fig. 7) e em machos adultos, atinge seu máximo desenvolvimento. Da sua forma-

ção participam dois ossos: frontal em sua porção anterior (a partir de certa idade), onde

é pouco desenvolvida, e o parietal em sua porção médio-posterior, onde é mais desen-

volvida. A crista sagital estende-se, ântero-posteriormente, desde o nível do processo

supra-orbital no frontal, até sua confluência com a crista nucal externa, sobrepondo-se

assim às suturas interfrontal e interparietal.

Crista nucal externa: formato aproximado de um “V”de ápice anterior, limitan-

do-se anteriormente com os parietais, posteriormente com a escama do occipital e late-

ralmente estendendo-se em direção ao esquamosal. É uma crista espessa e rugosa po-

dendo apresentar, em machos adultos, uma série de tuberosidades irregulares. Em jo-

vens e fêmeas está pouco desenvolvida (figs. 6,7).

Constrição pós-orbital: no frontal, com grau variável de constrição principalmen-

te de acordo com a idade. Em jovens é proporcionalmente menos marcada do que em

adultos. Situa-se cerca de 20 mm posteriormente ao processo supra-orbital do frontal;

anteriormente à cavidade craniana, sendo o limite ântero-medial das fenestras tempo-

ralis.

Fenestra temporal: abertura entre a parede lateral do crânio, a órbita e o arco

zigomático; em adultos, de formato aproximado a um retângulo inclinado. Continua-se

anteriormente pela órbita, médio-posteriormente com a fossa temporal, limitando-se

látero-posteriormente com o arco zigomático.

Orbita: grande, arredondada e, em seu limite posterior, conflui com a fossa tem-

poral; a borda dorsal formada pelo osso frontal, principalmente pelo processo supra-

orbital. Borda anterior constituída pelo processo pré-orbital do maxilar e pelo lacrimal

(visível quando ainda não fundido). Borda ântero-ventral formada pela face dorsal da

base e pelo próprio processo zigomático do maxilar, sendo este caráter considerado por

WYSS (1987) como uma sinapomorfia de Pinnipedia. Borda póstero-ventral composta

pela face dorso-anterior do jugal, estendendo-se posteriormente até o processo pós-orbital.

Parede medial da órbita constituída dorsalmente pelo frontal e por pequena porção do

etmóide e, mais anteriormente, pelo lacrimal e maxilo-turbinal. Ventralmente, a estas

estruturas, encontra-se a vacuidade orbital.

Arco zigomático: participa da formação da órbita, sendo o limite lateral da fenestra

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):63-74 , 04 out. 1996

66 DREHMER & FERIGOLO

temporal. Está constituído por três ossos distintos: processo zigomätico do maxilar em

sua porção anterior, jugal em sua porção média, e pelo processo zigomático do esquamosal

em sua porção mais posterior. Apresenta altura relativamente uniforme; o processo pós-

orbital do jugal é a porção mais alta. Nesta vista, é a porção mais lateral do crânio,

apresentando-se aproximadamente retilíneo e estende-se obliquamente da região anteri-

or para a posterior no sentido médio-lateral.

Orifício nasal externo: aproximadamente triangular, de ápice anterior, na região

do rostro; limitado posterior e dorsalmente pelos nasais, lateralmente pelos processos

nasais do pré-maxilar e anterior e ventralmente pelo corpo do pré-maxilar.

Fossa temporal: não apresenta maiores acidentes, sendo apenas melhor observável

o limite entre as contra-laterais ao nível da crista sagital, em adultos.

Vista palatal (fig. 2). Destacam-se o palato secundário, coanas e forames

basicranianos, dos quais são descritos o forame lacerado posterior (=forame jugular) e o

forame lacerado médio (=forame da carótida interna). Os arcos zigomáticos, processos

mastóideos e côndilos occipitais estão descritos em outras vistas.

Palato secundário: separa a cavidade oral da cavidade nasal, côncavo no sentido

látero-lateral. Em jovens e fêmeas (figs. 6, 7) esta concavidade é menos acentuada ou

mesmo o palato é praticamente plano. A porção mais larga varia nos diferentes espéci-

mes mas, via de regra, situa-se ao nível dos PC5/ ou dos PC6/. Os ossos que contribuem

para sua formação são o pré-maxilar em sua porção anterior através da apófise palatina,

o maxilar em sua porção média através do processo palatino, e o palatino em sua porção

posterior através de sua lâmina horizontal. O palato secundário limita-se anterior e late-

ralmente pelas margens alveolares; posteriormente continua-se pelas lâminas verticais

dos palatinos e pterigóides, com os quais constitui os limites ventral e lateral das coanas.

Coanas: localizadas no limite posterior do palato secundário, limitam-se

dorsalmente com o vômer e a lâmina perpendicular do palatino, lateralmente por estas

últimas e, ventralmente, pela borda posterior da lâmina horizontal do palatino.

Forame lacerado médio (=forame da carótida interna): abertura circular no

basicrânio, por onde a artéria carótida interna penetra na cavidade craniana. Em jovens,

está formado quase inteiramente pelo ângulo póstero-lateral do basisfenóide, junto ao

limite de fusão com o alisfenóide; apenas pequena porção da borda posterior está forma-

da (ventralmente) pelo entotimpânico. Em adultos, pode haver grande variação. Nos

crânios MCN 2501, 2522 e 1021, verificamos a mesma situação descrita para os jovens.

Em MCN 2461 e 2497 existe uma projeção do entotimpânico em forma de anel, que

delimita completamente o forame lacerado médio. Em MCN 2523 há uma situação in-

termediária, onde a projeção do entotimpânico não é completa (não se forma o anel),

delimitando apenas parcialmente o forame.

Forame lacerado posterior (=forame jugular); BERTA (1991:4) considera “... a

greatly jugular foramen enlarged...” como uma sinapormorfia de Pinnipedimorpha. Nesta

espécie, é a maior abertura desta vista, de formato variável de acordo com o espécime

considerado e com a idade do indivíduo, normalmente, em adultos, circular ou levemen-

te ovalado. Os ossos que o delimitam são: exoccipital (póstero-medialmente), basioccipital

(ântero-medialmente), processo mastóideo (póstero-lateralmente) e entotimpânico (äntero-

lateralmente), podendo haver variações. Em jovens a borda posterior do forame lacerado

posterior está formada pelo exoccipital, a lateral pelo processo mastóideo, a medial pelo

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 63-74, 04 out. 1996

Descrição do sincrânio de Arctocephalus australis ... 67

Figs. 1,2. Sincrânio de Arctocephalus australis. Cränio,© adulto; I, dorsal; 2, palatal. (az, arco zigomätico; ca,

coanas, cne, crista nucal externa; cpo, constrição pös-orbital; cs, crista sagital; fet, fenestra temporal; flm,

forame lacerado médio; flp, forame lacerado posterior; o, órbita; one, orifício nasal externo; ps, palato secun-

dário).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):63-74 , 04 out. 1996

68 DREHMER & FERIGOLO

basioccipital, e a anterior pelo entotimpânico (junto à abertura posterior do canal da

carótida). Esta mesma configuração pode ocorrer em adultos, como nos espécimes MCN

2501, 2497 e mais claramente em MCN 2461, onde é observável que o exoccipital pro-

jeta-se mais anteriormente, de forma que o basioccipital não mais participa da formação

da borda medial do forame. Nestes espécimes este forame tende a ser mais ovalado.

Vista lateral (fig. 3). As principais estruturas são a vacuidade orbital, a fossa tem-

poral, a crista nucal externa e o processo mastóideo. O forame lacerado anterior (=fissura

orbital) e o forame redondo são melhor visíveis em vista oblíqua anterior ascendente.

Para a visualização da vacuidade orbital há a necessidade da remoção do arco zigomático.

Fossa temporal: limitada dorsalmente pela crista sagital, posteriormente pela crista

nucal externa e ventralmente pela face dorsal do processo zigomático do esquamosal.

Fenestra temporal limitada anteriormente pelo processo supra-orbital do frontal e pelo

processo pós-orbital do jugal; medialmente pelo frontal e parietal; lateralmente pelo

Jugal e processo zigomático do esquamosal; apresenta formato variável. Pelo fato das

cristas sagital e nucal externa ainda estarem em desenvolvimento em jovens, a fossa

temporal está mal definida, sendo que seu limite dorsal são as cristas, frontal externa,

anteriormente e parietal externa, posteriormente, nos espécimes onde estas já estão pre-

sentes.

Vacuidade orbital: forma irregular e variável, sendo um espaço elipsóide inter-

ósseo, na parede médio-ventral da órbita, e de cujos limites participam vários ossos.

Borda anterior formada pelo maxilo-turbinal; a ântero-dorsal pelo lacrimal e frontal;

posteriormente pela lâmina papirácea lateral do etmóide; a posterior ainda formada, em

pequena porção, pelo orbitoesfenóide, e principalmente pela lâmina perpendicular do

palatino; a ventral por uma porção da mesma lâmina do palatino e pelo maxilar. WYSS

(1987) definiu esta vacuidade como um espaço não ossificado na parede ventral da órbi-

ta próximo à junção dos ossos frontal, maxilar e palatino, caracterizando-a como uma

sinapomorfia dos pinipédios.

Crista nucal externa: em machos adultos, bem desenvolvida, localizando-se so-

bre a sutura parieto-occipital. Estende-se da crista sagital, dorsalmente, até a região do

processo mastóideo, ventralmente, onde se bifurca em uma crista mastóidea anterior e

uma outra crista mastóidea posterior. Em jovens e em fêmeas, a crista nucal externa está

pouco desenvolvida. Nos espécimes muito jovens ela não passa de uma linha muito

tênue localizando-se, diferentemente, sobre o osso parietal, ou seja, anteriormente à su-

tura parieto-occipital.

Processo mastóideo: ausente em indivíduos jovens, sendo visível também em

vista lateral e occipital de adultos. Processo saliente, aproximadamente triangular, deli-

mitado anteriormente pelo meato acústico externo, posteriormente pela crista paraoccipital

e dorsalmente pela crista nucal externa. Sobre ele desenvolve-se o ossículo mastóideo,

que segundo CAVE & KING (1965) é uma epífise de tração no crânio dos otarídeos que

se desenvolve à medida em que o indivíduo vai atingindo a maturidade. O ossículo

localiza-se entre as cristas mastóideas anterior e posterior e pode eventualmente ser iso-

lado; entretanto, via de regra, está plenamente fundido. Seu formato varia nos diferentes

espécimes, sendo geralmente alongado dorso-ventralmente, convexo no mesmo senti-

do, com uma superfície externa lisa e outra, interna (a que se funde ao crânio), extrema-

mente rugosa.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 63-74, 04 out. 1996

Descrição do sincrânio de Arctocephalus australis ... 69

Vista oblíqua anterior ascendente (fig. 4). Esta particular vista torna-se impor-

tante para descrever os forames lacerado anterior e redondo, confluentes e não visíveis

nas vistas convencionais. BERTA (1991:4) considera que o: “... foramen rotundum merged

with the anterior lacerate foramen ...”, o que seria uma sinapomorfia de Pinnipedimorpha.

Estes dois forames formam uma abertura única, em forma de fenda, na região basicraniana.

Três ossos limitam esta abertura. Borda ventral formada pelo basisfenóide, dorsal pelo

orbitoesfenóide, em sua porção mais medial, e pelo alisfenóide, em sua porção mais

lateral. Existe grande variação individual na participação de cada osso na delimitação

das bordas deste forame, mas observamos que em adultos a participação do

orbitoesfenóide diminui em relação à participação do alisfenóide e do basisfenóide, que

aumenta quando se comparam jovens e adultos. Esta abertura é designada como fissura

esfenoidal.

Vista occipital (fig. 5). Em jovens o crânio tem um formato arredondado nesta

vista e, pela ausência de crista nucal externa, pode-se observar dorso-lateralmente o

parietal. Em adultos, principalmente em machos, o crânio é mais triangular (base no

basicrânio), seu limite dorsal é a crista nucal externa.

Côndilos occipitais: região mais posterior do crânio, apresenta uma faceta forte-

mente convexa de articulação para o átlas. Não há diferença morfológica importante nos

côndilos occipitais dos adultos e jovens, apenas que nos primeiros estão algo

verticalizados, convergentes ventralmente, enquanto que em jovens estão mais inclina-

dos lateralmente e relativamente mais afastados entre si, com sua borda médio-ventral

se projetando, em extensão variável, sobre o forame magno.

Forame magno: o maior do crânio, circular nos jovens e alongado dorso-ventral-

mente nos adultos. Esta forma é devido, em parte, à projeção medial dos côndilos sobre

o forame. A borda dorsal formada pela escama do occipital (supra-occipital), as laterais

pelos côndilos, e a ventral pela borda posterior do corpo do occipital (basioccipital).

Processo para-occipital: Protuberância conspícua na porção lateral da região

occipital do crânio, aproximadamente no limite do occipital com o processo mastóideo,

também denominado processo jugular. Partindo deste processo, em direção látero-ven-

tral, existe um crista robusta, a crista para-occipital, que se estende até a crista mastóidea

posterior no processo mastóideo, melhor visível em vista lateral. TEDFORD (1976:372)

considerou “... paroccipital and mastoid processes close together, united by strong ridge

of bone”, como uma sinapomorfia de Ursidae e Otariidae.

Dentário (figs. 8, 9): constituído por porções distintas: (1) corpo ou porção hori-

zontal, (2) ramo ou porção vertical.

Corpo: pode ser subdividido, para fins de estudo, em partes (incisiva e molar),

bordas (dorsal e ventral) e faces (lateral e medial).

Parte incisiva do corpo: porção mais anterior, reduzida, entre o limite anterior da

sínfise mandibular e o alvéolo do canino; compreende os alvéolos dos dentes incisivos,

I1 e 1/2, entre os quais há uma lâmina do septo inter-alveolar. O alvéolo do 1/2 limita-se

com o alvéolo do canino por um septo inter-alveolar pouco desenvolvido, de maneira

que o 1/2 quase faz contato com o canino. No espécime 2522 (e), este septo está bem

marcado, no que difere dos demais espécimes.

Parte molar do corpo: constitui a maior porção do dentário, apresentando a borda

alveolar (dorsal), a borda ventral, e duas faces (lateral e medial).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):63-74 , 04 out. 1996

10 DREHMER & FERIGOLO

Borda dorsal do corpo: constitui a borda alveolar onde estão os alvéolos do cani-

no e dos pós-caninos. Um pequeno diastema separa o alvéolo do C/1 do alvéolo do PC/

1. Posteriormente há os alvéolos para os cinco pós-caninos (PC/1 a PC/5), separados

por septos inter-alveolares bem definidos, variando em espessura de acordo com os

espécimes, mas, via de regra, o septo inter-alveolar PC/1-PC/2 é o mais espesso.

Borda ventral do corpo: marca a confluência das faces lateral e medial, é bastante

espessa e retilínea, diferentemente dos carnívoros fissípedos em geral, onde há uma

curvatura típica.

Face lateral do corpo: superfície relativamente plana que se limita posteriormen-

te com a fossa massetérica (no ramo) e anteriormente com a sínfise (limite anterior do

dentário). O acidente anatômico mais significativo desta face é a presença dos forames

mentais. Em carnívoros fissípedos verifica-se a presença de três: mentais anterior, médio

e posterior; todos constituem aberturas do canal mandibular. Este padrão, entretanto,

apresenta-se altamente variável, tanto em número quanto em posição na amostra de

estudo. O forame mental anterior, localizado ventralmente ao alvéolo do I/l junto ao

limite da região sinfisial, apresenta-se como o menos variável. Os demais não podem ser

facilmente identificados, devido à presença de mais de dois forames na face lateral,

justamente na região correspondente à presença dos forames mentais médio e posterior

em carnívoros fissípedos. Esta região inicia-se ao nível do PC/1, estendendo-se normal-

mente até o PC/3, podendo alcançar o PC/4, egüidistante em relação à borda alveolar e

ventral do osso. Quanto ao tamanho, existem desde pequenos forames, até aberturas em

forma de fenda como em MCN 2461 (e). Esta enorme variação verifica-se também de

um dentário para o outro, no mesmo espécime, como é o caso do exemplar MCN 2522.

O crânio MCN 2501 apresenta, no dentário esquerdo, um forame ao nível do diastema

entre o C/l e o PC/1, e um segundo, ao nível do septo inter-alveolar do PC/1-PC/2,

ambos maiores que os demais; e no dentário direito, um forame ao nível do PC/2 e um

outro ao nível do PC/3, também notavelmente maiores que os demais. Este espécime é o

que mais se aproxima do padrão fissípedo citado anteriormente. Nos espécimes jovens

também existe grande variação.

Face medial do corpo: não apresenta acidentes anatômicos significativos, exceto

a região da face articular da sínfise, que se localiza na parte anterior, estendendo-se

desde o limite anterior do dentário, medialmente ao alvéolo do I/1, até o nível aproxima-

do do alvéolo do PC/1. É uma superfície extremamente rugosa de formato elíptico em

espécimes adultos. Não observamos nenhum grau de fusão entre os dentários, em ne-

nhum espécime.

Em espécimes jovens, a face articular da sínfise difere daquelas observadas nos

adultos, não só no tamanho, como também na forma. Nos jovens, é mais alongada,

menos rugosa, e se estende posteriormente até o PC/2. A partir da sínfise, os dentários

direito e esquerdo divergem posteriormente, formando um ângulo que em adultos varia

de 30 a 40 graus. Desta forma os dentários delimitam uma área em forma de “V”.

Ramo: porção vertical do dentário corresponde à porção posterior deste, sem

dentes, apresentando três processos: coronóide, condilar ou articular e angular; pode-

mos identificar ainda as faces lateral e medial. Para facilitar o estudo, o ramo será descri-

to em vista lateral e medial.

Face lateral do ramo: a feição anatômica mais importante afora os processos, é

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre; (81): 63-74, 04 out. 1996

Descrição do sincrânio de Arctocephalus australis ... zul

Figs. 3-9. Sincrânio de Arctocephalus australis. Crânio © adulto; 3, lateral (arco zigomätico parcialmente

removido); 4, vista oblíqua anterior ascendente; 5, occipital. Crânio, S jovem: 6, dorsal (jugais e nasais remo-

vidos). Crânio, ? adulta: 7, dorsal. Dentário, 4 adulto: 8, lateral; 9, medial. (al, alisfenöide; ba, borda alveolar;

bs, basisfenöide; bv, borda ventral; ccn, crista condilar; ccr, crista coronöide; cne, crista nucal externa; co,

côndilo occipital; cr, corpo; cs, crista sagital; fas, face articular da sínfise; fe, fissura esfenoidal; fme, forames

mentais; fmg, forame magno; fmn, forame mandibular; fms, fossa massetérica; fot, fossa temporal; 1, incisura;

os, orbitoesfenóide; pa, processo angular; pam, parte molar; pcn, processo condilar; pcr, processo coronóide;

Pi, parte incisiva; pp, processo para-occipital; prm, processo mastóideo; r, ramo; vo, vacuidade orbital).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):63-74 , 04 out. 1996

E) DREHMER & FERIGOLO

uma extensa área côncava, a fossa massetérica, delimitada anteriormente pela crista

coronóide, ventralmente pela crista condilar, ântero-ventralmente pela confluência des-

tas, dorsalmente pelo processo coronóide e posteriormente pelo processo condilar; esta

é a região de inserção dos músculos masseter e zigomático-mandibular, principais res-

ponsáveis pela adução mandibular. O processo coronóide se estende mais dorsalmente

do que o processo condilar, constituindo-se de uma lâmina óssea espessa na extremida-

de, para inserção do músculo temporal. A borda ântero-dorsal é arredondada, estenden-

do-se desde o ponto mais dorsal do processo, até continuar-se anteriormente com a bor-

da alveolar e com a crista coronóide que, acaba por confluir com a crista condilar lateral-

mente. A borda posterior inicia-se no ponto mais dorsal do processo de forma retilínea,

inclina-se posteriormente, e se continua pela incisura do dentário.

O processo coronóide é uma superfície plana, não sendo possível precisar sua

separação da fossa massetérica. O espécime MCN 2461 apresenta, em ambos os lados,

uma crista conspícua que atravessa o processo coronóide no sentido ântero-posterior,

possivelmente o limite de inserção do músculo temporal.

O processo angular é parcialmente visível por sua face ventro-lateral, que se apre-

senta ligeiramente plana e suavemente inclinada posteriormente. Esta constitui, junta-

mente com a borda ventral do ramo do dentário, a região de inserção do músculo digástrico,

que determina a abdução mandibular.

O processo condilar, região de articulação com o crânio, localiza-se posterior-

mente à incisura do dentário, abaixo do processo coronóide e constitui a região mais

posterior do dentário. Seu nível está aproximadamente 0,5 cm acima do nível oclusal

dentário. Ventralmente se continua pela crista condilar, até que esta conflua com a crista

coronóide. Este processo é muito alongado transversalmente, comprimido no sentido

dorso-ventral, de forma que a face articular apresenta-se fortemente convexa no sentido

ântero-posterior, e plana no sentido látero-medial (em vista posterior a face articular é

mais alta na sua porção medial, diminuindo lateralmente).

Face medial do ramo: nesta o ramo apresenta uma outra fossa, não tão desenvol-

vida quanto a massetérica, que se estende da borda anterior do processo coronóide até o

nível do forame mandibular. Este, localiza-se junto ao limite superior da base do proces-

so angular e constitui-se na abertura proximal do canal mandibular (da artéria, veia e

nervo mandibular). O canal mandibular se abre nos múltiplos forames mentais presentes

na face lateral do corpo do dentário. Uma crista, em forma de “C”invertido, estende-se

dorso-ventralmente desde a crista coronóide até o nível do forame mandibular.

O processo coronóide apresenta-se suavemente côncavo e está limitado anterior-

mente pela crista em forma de “C” invertido.

O processo angular, o mais ventral dos processos do dentário, está deslocado

medialmente e ligeiramente comprimido dorso-ventralmente. Tem duas faces distintas,

medial e ventro-lateral (já descrita na vista lateral). A face medial, elipsóide e ligeira-

mente côncava no sentido dorso-ventral e ântero-posterior, é o local de inserção do mús-

culo pterigóide que colabora na adução e nos movimentos látero-mediais da mandíbula.

Uma afirmação de KING (1969:846) ilustra as dificuldades que podem surgir em

estudos de descrição craniana, sobretudo nessa espécie: “Skulls of all species of

Arctocephalus are very like each other and it came as no surprise to find that there was

difficulty in finding good characters to distinguish the skulls”.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 63-74, 04 out. 1996

Descrição do sincrânio de Arctocephalus australis ... 73

As discussões sobre crânio em Arctocephalus são superficiais e restringem-se

muitas vezes a variações no tamanho. KING (1954:334) referiu-se a 4. australis: “Skull:

condylo-basal leght up to about 250 mm in adult male. Skull squarish in general shape,

with thick zigomatic arches and short broad nasals”; apresentou uma chave para identi-

ficação dos otarídeos da costa pacífica da América onde registrou para A. australis:

(KING op. cit.:335) “...interorbital region less than 20% of condylo-basal lenght in adult

animals. Snout much longer than it is high”, observando que estes caracteres aplicam-se

principalmente em machos adultos. O quadro comparativo proposto por BONNER (1981),

embora útil taxonomicamente, possui caracteres como tamanho do rostro, do palato e

dos nasais, e posição das séries dentárias superiores, os quais apresentam grande varia-

ção, como observamos, que tornam a sua aplicação limitada a indivíduos adultos.

Os caracteres utilizados por REPENNING et al. (1971) como mais úteis na se-

paração entre as espécies de Arctocephalus são medidas várias, que no seu conjunto

refletem apenas parte da variação que pode ocorrer na morfologia do sincränio, pelo

menos para A. australis, considerando que utilizou somente 9 espécimes, todos machos.

A descrição detalhada, de indivíduos representativos do maior número possível de está-

gios do desenvolvimento ontogenético da espécie, incluindo machos e fêmeas, contribui

para o conhecimento das diferenças intra e interespecíficas. Estruturas como as cristas

sagital, frontal e parietal externa, o processo mastóideo, a constrição pós-orbital, a fenestra

temporal, o forame lacerado posterior, o palato secundário, o forame lacerado médio e o

forame magno só podem ser compreendidos através do desenvolvimento ontogenético

da espécie, uma vez que a forma e os ossos que contribuem nas suas formações variam

consideravelmente de acordo com o grau de maturidade do indivíduo.

Alguns acidentes anatômicos de A. australis podem representar autapomorfias

da espécie. Entretanto, essas presumíveis autapomorfias deverão ser testadas mediante

análise da variação destes caracteres nas outras 7 espécies. Somente uma análise de

todas as espécies poderá contribuir para a elucidação das relações filogenéticas em dife-

rentes níveis, inclusive trazendo subsídios à compreensão das relações dos pinipédios

com os demais carnívoros.

Agradecimentos. À CAPES e ao CNPq, através do seu programa RHAE, que financiaram a execu-

ção deste trabalho e à Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul que deu suporte ao seu desenvolvimento.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BERTA, A. 1991. New Enaliarctos * (Pinnipedimorpha) from the Oligocene and Miocene of Oregon and the

Role of “Enaliarctids”in Pinniped Phylogeny. Smithson. Contr. Paleob., Washington, (69):1-33.

— . 1994. New Specimens of the Pinnipediform Pteronarctos from the Miocene of Oregon. Smithson. Contr.

Paleob., Washington, (78):1-30.

BONNER, W. N. 1981. Southern Fur Seals - Arctocephalus (Geoffroy Saint-Hilaire and Cuvier, 1826). In:

RIDGWAY, S. H. & HARRISON, R. J. eds., Handbook of Marine Mammals. The Walrus, Sea Lions,

Fur Seals and Sea Otter. New York, Academic Press. v.1, p. 161-208.

CAVE, A. J. E, & KING, J. E. 1965. The ossiculum mastoideum of the otariid skull. Ann. Mag. nat. Hist.,

London (13) 7(76): 235-240.

GRAY, J. E. 1859. On the Sea-Lions, or Lobos marinos of the Spaniards, on the Coast of California. Proc. zool.

Soc. Lond. London, 1859: 357-361.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):63-74 , 04 out. 1996

14 DREHMER & FERIGOLO

1872. On the Sea-bear of New Zealand (Arctocephalus cinereus) and the North- Australian Sea-bear

(Gypsophoca tropicalis). Proc. zool. Soc. Lond. London. 1872: 653-662.

KING. J. E. 1954. The otariid seals of the Pacific Coast of America. Bull. Br. Mus. nat. Hist., Zoology,

London, 2(10): 309-337.

— . 1969. The identity of the fur seals of Australia. Aust. J. Zool., Melbourne, 17 (5):841-853.

__. 1971. The lacrimal bone in Otariidae. Mammalia. Paris, 35(3):465-470.

NOMINA ANATOMICA. 1984. Rio de Janeiro, Médica e Científica, 110p.

REPENNING, C. A.; PETERSON, R. S. & HUBBS, C. L. 1971. Contributions to the systematics of the

southern fur seals, with particular reference to the Juan Fernádez and Guadalupe species. Antarctic Res.

Ser., Washington, (18):1-34.

TEDFORD, R. H. 1976. Relationship of Pinnipeds to other Carnivores (Mammalia). Syst. Zool., Washington,

25(4):363-374.

WYSS,A.R. 1987. The Walrus Auditory Region and the Monophyly of the Pinnipeds. Am. Mus. Novit., New

York, (28/71): 1-31.

XIMÉNEZ, L.: LIMA, M.; PONCE DE LEÓN,A. et al. 1984. Estudio estadistico de relaciones craneales en el

"lobo fino” sudamericano Arctocephalus australis (Zimmermann, 1783). An Ind. Lobera Pesq. Esta-

do. Montevideo, p.1-33.

Recebido em 6.06.1995; aceito em 30.10.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 63-74, 04 out. 1996

ULTRASTRUCTURE OF THE HAEMOCYTES ASSOCIATED WITH THE

DORSAL TEGUMENT OF APIS DORSATA (HYMENOPTERA, APIDAE)

WORKERS !

Carminda da Cruz-Landim?

ABSTRACT

The presence of haemocytes underneath the enlarged epithelium of III, IV and V tergites of forager

workers of Apis dorsata Fabricius, 1793, is reported. This epithelium shows the morphology of wax glands in

a post-secretory (involutive) phase. The haemocytes are plasmatocytes and granulocytes showing morphological

evidence of both phagocytic activity and intracellular digestion. The glandular epithelium, however, remains

entire though not actively secreting and effective phagocytosis was not observed.

KEYWORDS. Haemocytes, glandular epithelium, tergite, Apis dorsata.

INTRODUCTION

Insects present several different types of haemocytes varying in form and number

according to species, physiological state, and body location (GILLIAM & SHIMANUKI,

1971; CRUZ-LANDIM & S.-DA-CUNHA, 1971, GUPTA, 1979). These cells perform

several functions, acting during insect growth and differentiation (WHITTEN, 1969); in

defense against foreign or noxious agents (FISHER, 1970; FEIR, 1979; RATCLIFF &

ROWLEY, 1979; WAGO, 1982; BIDOCHKA & KHACHATOURIAN, 1987); in

connective tissue formation (ASHURST, 1979) in epidermis regeneration (LAI-FOOK,

1970).

The social bees present many exocrine glands derived from the tegumentary

epidermis, whose occurrence is specifically related to the caste. Development and

1. Supported by FAPESP (Proc. 93/2389-7; 92/4700-0) and CNPq (520987/93-4).

2. Departamento de Biologia e Centro de Estudos de Insetos Sociais, Instituto de Biociências, Universidade Estadual Paulista, 13506-900, Rio

Claro, SP, Brazil, FAX (0195) 34-0009, E-mail UERCB@BRFAPESP.BITNET.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):75-80, 04 out.1996

16 CRUZ - LANDIM

secretory cycles of these glands are characteristically linked to the individual’s role in

the society (MOTA & CRUZ-LANDIM, 1988; CRUZ-LANDIM & MOTA, 1993).

The haemocytes close to the epidermis in foragers workers is described and

discussed the association, morphology and possible relationships of glandular structures

and blood cells.

MATERIAL AND METHODS

The specimens of Apis dorsata Fabricius, 1793, were collected in Bangalore, India, while visiting

flowers, and therefore, were identified as forager workers. (This species is not found in Brazil neither as native

or introduced species). The specimens were fixed in glutaraldehyde for electron microscopy; the dorsal tegument

of abdomen of three different individuals was dissected into the component tergites. Thereupon they were

refixed in 2,5% glutaraldehyde in 0,1M Na cacodylate buffer, pH 7.2 at 4°C for 2-4h, and post fixed in 1%

osmium tetroxide in the same buffer. The tergites were individually embbeded in Epon-Araldite. Thin sections

were stained with uranyl acetate and lead citrate as usual, then examined and photographed in a Zeiss EM9S2

transmission electron microscope, and the remaining emblocked material deposited in the Departamento de

Biologia, Universidade Estadual Paulista, Rio Claro, SP.

RESULTS

Two types of haemocytes were observed underlying to the tegument of III, IV

and V tergites of the bee abdomen. In the IV segment the haemocytes are packed together

and organized as a continuous layer underlying the epidermis (fig. 1), while in segments

HI and V, the cells are also adherent to the epidermis but the layer is discontinuous (figs.

2,3). The haemocytes attached to the epidermis have elongated or irregular forms (figs.

1-3), though some spherical cells were also observed, placed slightly away from the

epithelium (fig. 4).

The two types of haemocytes were identified as plasmatocytes (PL) and

granulocytes (GR). The PL appear as elongated or spherical cells, presenting few small

granules, with electrondense, homogeneous content, and small, clear, vacuoles in the

cytoplasm. The nucleus presents masses of heterochromatin lining internally the nuclear

envelop and its shape follows that of the cell (figs. 1,2,4). The GRs, more frequent than

PLs, are rather eliptic or irregular cells, the cytoplasm being filled with granules of various

sizes, shapes and electron densities. Some of the haemocytes have pseudopodia-like

projections of the cell surface, suggesting the possibility of locomotion and phagocytosis

(fig. 1). However, phagocytic activity was not effectively observed, despite of the presence

of lysosomes (fig. 1).

The epidermis of the adult bee, in non glandular regions, is formed by a very

flat epithelium, without signs of cellular activity, but in the segments where the haemocytes

were present the epidermal cells were enlarged and show signs of a post-secretory stage.

The cells are probably involved with the lipid metabolism for they show masses of

compacted smooth endoplasmic reticulum (fig. 2) and lipid droplets in the cytoplasm.

This morphology is similar to that of a wax gland in post-secretory phase, undergoing

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):75-80 , 04 out.1996

Ultrastructure of the haemocytes... 17

2 A >

Figs. 1,2: Apis dorsata: |, Continuous layer of granulocytes below the epidermis of the IV tergite; 2, discontinuous

layer of haemocytes below the epidermis of III tergite. (ax, axon; bl, basal lamina; ep, epithelium; g, dense

granules; gr, granulocytes; 1, lipid; ly, Iysosomes; n, nuclei; pl, plasmatocytes; sr, smooth endoplasmic

reticulum).Bar = 1 um.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):75-80, 04 out.1996

78 CRUZ - LANDIM

Figs. 3,4. Haemocytes of Apis dorsata. 3, granulocytes(gr) showing pseudopodia-like projections(p); 4, round

plasmatocyte (rl) showing pinocytic vesicles (arrows) at the surface. (fb, fat body; g, granules; 1, lipid; m,

mitochondria, n, nucleus; nu, nucleolus; pl, plasmatocytes; re, routh endoplasmic reticulum). Bar= 1 um.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):75-80 , 04 out.1996

Ultrastructure of the haemocytes... 79

reabsorption process. Some cellular fragments, probably resulting from fat body cells

desintegration, were observed close to the haemocytes (fig. 4).

DISCUSSION

Apis is a genus with few species of which only Apis mellifera L., 1758 has been

well studied from the morphological and physiological respects. Apis dorsata is a related,

more primitive species whose study is important to understanding some of the bee’s

traits, in the group evolution . The observed increase in height of the epidermis of the III,

IV and V tergites in adult of A.dorsata was unexpected according to the A.mellifera

pattern. Workers of A.mellifera do not have epithelial glands in the tergites, but only in

the III to VI sternites. On turn the queens of these bees bear epithelial glands, that develop

continuously throughout their lifetime, but are restricted to the III tergite (MOTA &

CRUZ-LANDIM, 1988). There is no report of the presence of a glandular epithelium in

the other tergites of any caste or life period of A.mellifera, however BILLEN &

DUMORTIER (1986) reported the presence of tergal unicellular glands in workers of an

orphan colony of A.mellifera, a gland type expected in queens, but this is a different kind

of gland and an abnormal condition in the colony.

The haemocytes association to the epithelium has been observed in all specimens

studied, restricted to the III, IV and V tergites. In all other tergites the epidermis was

formed by very flat cells, as expected for non-glandular regions of the tegument, and

there were no haemocytes attached to it. The formely mentioned morphological

observations seem to indicate that the haemocytes, here described for A.dorsata, would

be involved in the reabsorption processes of the overlying glandular epithelium. The

exact mechanism of this involvement could not yet be ascertained, since the observations

were only morphological ones. There are suggestions of a phagocytic process; but the

epithelium remains intact despite signs of non-funcitonality. Some evidence for granules

liberation from the GR have been observed by CROSSLEY (1979) and by the autor and

Silva de Moraes. One possibility would be that chemical or enzymatic interactions might

occur between the glandular epithelium and the underlying haemocytes.

REFERENCES

ASHURST, D.E. 1979. Hemocytes and connective tissue: a critical assessment. In: GUPTA, A.P. ed. Insect

Hemocytes: development, forms, functions and techniques. New York, Cambridge Univ. p. 319-330.

BIDOCHKA, M.J. & KHACHATOURIAN, G.G. 1987. Hemocytic defense response to the entomopathogenic

fungus Beauveria bassiana in the migratory grasshopper Melanoplus sanguinipes. Entomol. exp. appl.

Dordrecht, 45:151-156.

BILLEN, J.P.J. & DUMORTIER, K.T.M. 1986. Plasticity of honeybee castes. Occurrence of tergal glands in

workers. Naturwissenschaften, Heidelberg, 73:332-333.

CROSSLEY, A.C. 1979. Biochemical and ultrastructural aspects of synthesis, storage and secretion in

hemocytes. In: GUPTA, A.P. ed. Insect Hemocytes: development, forms, functions and techniques.

New York, Cambridge Univ. p. 423-473.

CRUZ-LANDIM, C. & S.-DA-CUNHA, M.A. 1971. Transformações pós-embrionárias em Melipona

Iheringia, Sér. Zool., Barte Alegre, (81):75-80, 04 out.1996

80 CRUZ - LANDIM

quadrifasciata anthidioides Lep. V. Hemócitos das fases imaturas (Hymenoptera, Apidae). Revta bras.

Biol., Rio de Janeiro, 31:471-483.

CRUZ-LANDIM, C. & MOTA, M.H.V.B. 1993. Differences between the female castes and males of

Scaptotrigona postica depilis (Hymenoptera, Apidae, Meliponinae) in the occurrence and ultrastructure of

tegumentary exocrine glands. Naturalia, São Paulo, 18:173-187.

FEIR, D. 1979. Cellular and humoral responses to toxic substances. In: GUPTA A.P. ed. Insect Hemocytes:

development, forms, functions and techniques. New York, Cambridge Univ. p. 415-421.

FISHER, R.C. 1970. Changes in the composition of host haemolymph after attack by an insect parasitoid.

Nature, London, 5253:191-192;

GILLIAM, M.A. & SHIMANUKI, H. 1971. Blood cells of the worker honeybee. J. Apic. Res., London,

10:79-85.

GUPTA, A.P. 1979. Hemocyte types: their structures, synonymies, interrelationships, and taxonomic significance.

In: GUPTA A.P. ed. Insect Hemocytes: development, forms, functions and techniques. New York,

Cambridge Univ. p.85-127.

LAI-FOOK, J. 1970. Haemocytes in the repair of wounds in insect (Rhodnius prolixus). J. Morph., New York,

130:297-314.

MOTA, M.H.V.B. & CRUZ-LANDIM, C. 1988. Ocorrência e morfometria de glândulas tegumentares

abdominais em Apis mellifera L. (Hymenoptera, Apidae). Revta bras. Zool., Curitiba, 5:119-154.

RATCLIFF, N.A. & ROWLEY, A.F. 1979. Role of hemocytes in defense against biological agents. In: GUPTA,

A.P. ed. Insect Hemocytes: development, forms, functions and techniques. New York, Cambridge Univ.

331-414.

WAGO, H. 1982. Involvement of microfilaments in filopodial function of phagocytic granular cells of the

silkworm, Bombyx mori. Developmental Comp. Immunol., Elmsford, 6:655-664.

WHITTEN, J.M. 1969. Haemocyte activity in relation to epidermal cell growth, cuticle secretion, and cell

death in a metamorphosing cyclorrhaphan pupa. J. Insect. Physiol., Oxford, 15:763-778.

Recebido em 29.12.1994; aceito em 3.10.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):75-80 , 04 out.1996

REVALIDATION OF PHTHEIROPOIOS GRACILIPES ( AMBLYCERA,

GYROPIDAE), WITH REMARKS ON ITS SYNOXENISM AND

DISTRIBUTION IN CTENOMYS SPECIES FROM ARGENTINA (RODENTIA,

CTENOMYIDAE)

Armando C. Cicchino!

Dolores del C. Castro!

ABSTRACT

Phtheiropoios gracilipes (Ewing, 1924) is revalidated from the synonymy of P. latipollicaris (Ewing,

1924), based on the type series and seven samples collected on five different Crenomys species. A characterization

and illustrations are provided. Its synoxenic occurrence with Gyropus parvus parvus (Ewing, 1924) and two

others Phtheiropoios species within the geographical ranges of those host species are commented.

KEYWORDS. Phtheiropoios gracilipes, Phthiraptera, synoxenism, Ctenomys, Argentina.

INTRODUCTION

Phtheiropoios gracilipes was described in the genus Gyropus Nitzsch, 1818 by

EWING (1924) (type species G. ovalis Nitzsch, 1818) from four females and one male,

collected on a female skin of Ctenomys colburni Allen, 1903 from Rio Negro ‚Argentina.

EICHLER (1939) erected the genus Phtheiropoios (type species P. wetmorei (Ewing,

1924)) including P. gracilipes. WERNECK (1948) examined the types and synonymized

P. gracilipes with P. latipollicaris (Ewing, 1924). This statement has been transcribed by

HOPKINS & CLAY (1952).

CICCHINO (1978), CASTRO & CICCHINO (1987) and CASTRO et al. (1987)

based on Werneck’s work, misidentified specimens collected on Ctenomys australis

Rusconi, 1934 from Buenos Aires Province, Argentina. Recently, CICCHINO & CASTRO

(1994) pointed out that four Phtheiropoios samples from four different Ctenomys species

(including the type host of P. gracilipes) belong to the same morphological species,

which has been previously identified erroneously as P. latipollicaris following somatic

features provided by WERNECK (1948), but leaving this situation unresolved.

1.Facultad de Ciencias Naturales y Museo de La Plata, Paseo del Bosque s/n, 1900 La Plata, Buenos Aires, Argentina. (Investigadores del

CONICET).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):81-86, 04 out. 1996

82 CICCHINO & CASTRO

After examination of the type series and samples of P. gracilipes, we propose to

revalidate this species, giving a diagnosis and the variation observed in seven different

samples of this louse found on six Ctenomys species, commenting its synoxenic occurrence

with Gyropus parvus parvus (Ewing, 1924) and other Phtheiropoios species within the

geographical ranges of these hosts.

MATERIALS AND METHODS

Most of the specimens examined were obtained alive from different Ctenomys species, also trapped

alive. All the specimens were fixed in ethanol-acetic 1:1 vol/vol mixture; in due time, mounted in slides

following the procedure described by CASTRO & CICCHINO (1978), using Eosin W as staining agent, and are

deposited in the Museo de La Plata collections (MLP), Buenos Aires, Argentina.

Syntypes of P. gracilipes housed in the Smithsonian Institution, National Museum of Natural History

(USNM), Washington DC, are also examined.

Phtheiropoios gracilipes (Ewing, 1924), revalidated

(Figs. 1-4, 6)

Gyropus gracilipes EWING, 1924: 18-19, fig 7, a male and four females syntypes mounted in a single slide,

from Huanuluán, El Cuy departament, Río Negro Province, Argentina (USNM 23751), examined;

WERNECK 1936: 441.

Phtheiropoios gracilipes; EICHLER, 1939: 161.

Phtheiropoios latipollicaris; WERNECK, 1948, : 79-81 (partim) (P. gracilipes synonymized); HOPKINS &

CLAY, 1952: 289. CICCHINO, 1978: 154 (misidentification). EMERSON & PRICE, 1981:42

(synonymy). CASTRO & CICCHINO, 1987: 360 ( misidentification). CASTRO et al., 1987: 322

(misidentification).

Phtheiropoios sp.; CICCHINO & CASTRO, 1994: 7.

Male (syntype fig. 1). Differential diagnosis: Total length 1.68 mm. Tarsal thumb

of foretarsus and general shape of the forficula ( fig. 6) resemble that of P. rionegrensis

Cicchino & Castro, 1994, and are very different of those of P. latipollicaris and P.

forficulatus (Neumann, 1912) (figs. 5, 7). Femoral tenaculum of leg II similar to that of P.

forficulatus and different of P. latipollicaris ( figs. 5, 7). Hind femur long and slender,

with tenaculum reduced, similar to P. forficulatus. Hind tibia also long and slender. Hind

tarsus slender, and claw slender and longer than middle tarsus, similar to P. forficulatus

(figs. 6, 7). Genitalia (figs. 3, 4) similar to P. latipollicaris, differing in shape of the

pseudopenis and ventral sclerite; penial sclerite very similar.

Female (fig. 2). Diagnosis: total length 1.94 mm. Similar to P. latipollicaris,

differing as follows: a) noticeably smaller (1,80-1,90 vs.2,10-2,20 mm); b) like the male,

leg IH differently shaped than II, being the femur and tibia longer and slender, the tarsus

slender and the claw longer and slender; c) larger number of setae in the abdomen.

Type host: Ctenomys colburni Allen, 1903.

Other hosts: records include those by EWING (1924), CICCHINO (1978) and

CICCHINO & CASTRO (1994): Ctenomys australis Rusconi, 1934; C. porteousi Thomas,

1916; C. mendocinus Philippi, 1869; C. haigi Thomas, 1919, and Ctenomys sp. from Villa

Mercedes, San Juan Province, Argentina.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):81-86, 04 out. 1996

Revalidation of Phtheiropoios gracilipes (Amblycera, Gyropidae) ... 83

Specimens examined. ARGENTINA. Mendoza: Lujan Department, La Punilla, 28d, 439, 18 nymphs

from C. mendocinus; Malargue Department, El Chihuido and El Peralito, 14 S, 179, 10 nymphs from C.

mendocinus. Buenos Aires: Guaminí Department, 145,20 , 15 nymphs from C. porteousi; Monte Hermoso

Department, Faro Monte Hermoso, 135, 1792, 20 nymphs from C. australis .Chubut: Cushamen Department,

El Maiten, 65, 109, 6 nymphs from €. haigi. San Luis: Villa Mercedes Department, Villa Mercedes, 5 S, 79,

3 nymphs from Ctenomys sp..

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—

Figs. 1-2. Phtheiropoios gracilipes (Ewing), syntypes: 1, male dorsal and ventral views; 2, female dorsal and

ventral views.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):81-86, 04 out. 1996

84 CICCHINO & CASTRO

Figs. 3-7. Phtheiropoios gracilipes (Ewing), male genitalia, from male syntype: 3, spiculation of the genital sac

(shown in the right side only, dorsal view); 4, ventral view. Left legs I-III of Phtheiropoios species: 5, P.

latipollicaris (Ewing) (from Ctenomys magellanicus); 6, P. gracilipes (from C. haigi); 7, P. forficulatus

(Neumann) (from C. mendocinus).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):81-86, 04 out. 1996

Revalidation of Phtheiropoios gracilipes (Amblycera, Gyropidae) ... 85

Fig. 8. Distribution of Ctenomys species known as hosts of Phtheiropoios gracilipes (Ewing): 1 and 2, C.

mendocinus; 3, Ctenomys sp. from Villa Mercedes, San Luis; 4, C. porteousi; 5, C. australis; 6, C. colburni; 7,

C. haigi.

Remarks. Although P. gracilipes is a morphological well defined species,

WERNECK (1948) synonymized this species with P. latipollicaris, after examining the

types. He stated that the differences suggested by EWING (1924) regarding the slenderness

of the hind legs might be due to retraction or shrinkage by curatorial procedures. The

examination of syntypes of P. gracilipes revealed that the degree of retraction is minimum,

and the shape and proportions of the hind legs 1s in agreement with the six other conspecific

samples available from five other Ctenomys species. WERNECK (1948 ) also noticed

differences between the hind tarsi of type specimens, both in P. gracilipes and P.

latipollicaris. In the large series of P. latipollicaris examined, in excellent conditions,

the members are much larger, stouter, being leg III similar in size and shape to leg II, and

the forficula distinctive, peculiarly shaped as EWING (1924) noted. The degree of variation

in size in this series is minimum, and it is far to overlap that of P. gracilipes. WERNECK

(1936: 436) pointed out that the Phtheiropoios species (listed under Gyropus) found on

Ctenomys may be clustered in two species-groups discriminated by the shape and size of

legs II, similar or dissimilar to leg II. The first group comprises P. ewingi (Werneck,

1936), P. pollicaris (Ewing, 1924), P. latipollicaris and P. nematophallus (Werneck,1935),

and the second constituted by P. forficulatus, P. gracilipes (incorrectly impressed as

gracilis) and P. wetmorei (Ewing, 1924). Unfortunately, this observation has been

apparently disregarded by him in 1948.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):81-86, 04 out. 1996

86 CICCHINO & CASTRO

Occurrence on the hosts. The term oligoxenic is here used in the sense originally

proposed by SANDGROUND (1929), and the term synoxenic, coined by WENZEL et

al.(1966), in a slightly wider sense, as employed by CICCHINO & CASTRO (1994) in

order to include not only two or more species of the same genus but two or more species

belonging to two closely related genera as undoubtedly Gyropus and Phtheiropoios are.

P. gracilipes is an oligoxenic species apparently restricted to the C. mendocinus-haigi

and C. porteousi-australis species complexes within the central third of Argentina, ranging

from the foothill of the Andean Precordillera to the south of Buenos Aires Province

(fig.8). This species apparently is always synoxenic with G. p. parvus or P. rionegrensis

or P. forficulatus, or with the former and one of the latter at the same time, but in different

localities.

Acknowledgments. To Dr. Oliver Flint (USNM), who kindly loaned the type slide of P. gracilipes. To

Lic. Juan José Bianchini and Dr. Diego Verzi, mastozoologists of the Museo de La Plata, who supplied us with

numerous specimens of lice collected from freshly killed rodents trapped by him, and with their special help

with the ctenomyid nomenclature and distribution.

REFERENCES

CASTRO, D. DEL C. & CICCHINO, €. C. 1978. Contribución al conocimiento de los malófagos argentinos

HI. Sobre algunos menoponidae de la avifauna bonaerense:Menacanthus eurysternus (Burm.) y Menacanthus

pici (Denny) (Insecta- Mallophaga). Revta Soc. ent. argent. Buenos Aires, 37 (1-4):77-83.

— 1987. Lista referencial de los Anoplura y Mallophaga conocidos como parásitos de mamíferos en la Argentina.

Revta Soc. ent. argent., Buenos Aires,44 (3-4):357-370.

CASTRO, D. DEL C.; MAURI, R.; CICCHINO,A.C.et al. 1987. Ectoparäsitos de roedores de la Provincia de

Buenos Aires, Argentina (Acarina, Anoplura, Mallophaga y Suctoria). Revta Soc. ent. argent. Buenos

Aires,44 (3-4): 317-327.

CICCHINO,A. C. 1978. Nuevos hospedadores para Gyropidae (Mallophaga- Amblycera) parásitos de Ctenomys

(Rodentia- Ctenomyidae) en Argentina. Neotropica, La Plata, 24 (72):154.

CICCHINO, A. C. & CASTRO, D. del C. 1994. On Gyropus parvus parvus (Ewing, 1924) and Phtheiropoios

rionegrensis sp. n. (Phthiraptera, Amblycera, Gyropidae) parasitic on Ctenomys haigi Thomas, 1919

(Mammalia, Rodentia, Ctenomyidae). Iheringia, Ser. Zool.,Porto Alegre, (77):3-14.

EICHLER, W., 1939. Notulae Mallophagologicae I. Neue Gattungen un Subfamilien von Haarlingen. Zool.

Anz., Liepzig, 129: 158-162.

EMERSON, K.C. & PRICE, R. D. 1981.A host parasite list of the Mallophaga of mammals. Misc. Publs. ent.

Soc. Am., Maryland, 12 (1):1-72.

EWING, H. E. 1924. On the taxonomy, biology and distribution of the biting lice of the family Gyropidae.

Proc. U. S. natn. Mus., Washington D.C., 36 (20): 1-42.

HOPKINS, G. H. E. & CLAY, T. 1952. A checklist of the genera & species of Mallophaga. London, British

Museum (Natural History). 362 p.

SANDGROUND, J. H. 1929. A consideration on relation of host specificity of helminths and metazoan parasites

to the phenomena of age resistance and acquired immunity. Parasitology, Cambridge, 21: 227-259.

WENZEL, R. L.; TIPTON, V. J. & KIEWLICZ, A. 1966. The Streblid batflies of Panama (Diptera, Calypterae,

Streblidae).In: WENZEL, R.L. &TIPTON, V. J. ed. Ectoparasites of Panama. Chicago, Field Museum

of Natural History, p. 405-475.

WERNECK, F. L. 1936. Contribuição ao conhecimento dos mallofagos encontrados nos mamíferos

sulamericanos. Mems Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 31 (3):391-589.

—. 1948. Os Mallophagos de mamiferos. Parte I: Amblycera e Ischnocera (Philopteridae e parte de

Trichodectidae). Rio de Janeiro, Revista Brasileira de Biologia, 243 p.

Recebido em 08.03.1995; aceito em 14.11.1995

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):81-86, 04 out. 1996

ANÁLISE QUALI-QUANTITATIVA DO COMPORTAMENTO DE

PENELOPE SUPERCILIARIS (AVES, CRACIDAE)

Sandra Bos Mikich!

ABSTRACT

QUALI-QUANTITATIVE ANALYSIS OF THE BEHAVIOR OF PENELOPE SUPERCILIARIS

(AVES, CRACIDAE). Behavioral observations of Penelope superciliaris Spix, 1825 were made in the Parque

Estadual de Vila Rica do Espírito Santo, Fênix, Paraná, Brazil, on January 1990 to October 1994, with 47 monthly

field trips summing up 1900 hours of data gathering. P. superciliaris lives in the forest were it is usually found

alone or in all the strata and it does not allow the closeness of human beings, flying to the inner forest and hiding

among the leaves and vines. The species can be found all year around in the study area but is more active between

October and January when it probably breeds. The main peak of activity is soon after the sunrise, but it has a

secondary peak in the late afternoon. Some behaviors related to the breeding activity are described as well as the

wing-drumming. Such behavior is usually performed early in the morning and seems to be related to the breeding

season, but only indirectly through the territoriality.

KEYWORDS. Aves, Cracidae, Penelope superciliaris, behavior.

INTRODUÇÃO

A família Cracidae distribui-se do sul dos Estados Unidos (Texas) ao Uruguai e norte

da Argentina (DELACOUR & AMADON, 1973; SICK, 1985). É atualmente um dos

grupos de aves neotropicais mais ameaçado de extinção, atingindo mais de um terço de suas

50 espécies (COLLAR & GONZAGA, 1988). Os cracídeos brasileiros se distinguem em

quatro padrões: aracuäs, jacus, jacutingas e mutuns (SICK, 1985). A jacupemba, Penelope

superciliaris Spix, 1825 pertence ao segundo grupo. Ocorre do sul dos rios Amazonas e

Madeira, pelo Brasil central, nordeste do Brasil merídio-oriental, até o leste do Paraguai

e Misiones, Argentina (VAURIE, 1968). Ocupa vários ambientes, como a floresta, a

capoeira baixa e os capões de floresta no cerrado (SICK, 1985). Devido à sua ampla

distribuição e, principalmente, à sua aparente tolerância às alterações do ambiente

(TEIXEIRA & ANTAS, 1981) P. superciliaris não é uma espécie ameaçada (SICK &

TEIXEIRA, 1979; BERNARDES et al., 1990; COLLAR et al., 1992). DELACOUR &

AMADON (1973) apresentam poucos dados sobre a biologia dessa espécie. Os cracídeos

1. Sociedade de Pesquisa em Vida Selvagem e Educação Ambiental. Rua Gutemberg, 345, 80420-030, Curitiba, PR, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

88 MIKICH

são considerados um dos grupos mais importantes dentre os grandes frugívoros especia-

listas (TERBORGH, 1986) e P. superciliaris é hoje um dos poucos representantes da

família em vários fragmentos florestais, onde desempenha importante papel no consumo

de frutos e dispersão de suas sementes. SILVA & STRAHL (1991) alertam que o papel dos

cracídeos como frugívoros e dispersores de sementes tem sido negligenciado pela

literatura científica.

Objetiva-se fornecer informações básicas sobre o comportamento de P. superciliaris

que possam, eventualmente, contribuir para sua conservação e a de outros membros da

família.

MATERIAL E MÉTODOS

Área de estudo. Parque Estadual de Vila Rica do Espírito Santo, Fênix, Paraná, Brasil (23°54' e 23°56'

Se51º56 e 51º58'W). O Parque, de 353,86 ha, está totalmente cercado por terras cultivadas, tratando-se de um

fragmento florestal (ITCF, 1987). Situado no Terceiro Planalto Paranaense, apresenta relevo suavemente

ondulado, altitude entre 290 e 374 m e revestimento florístico do tipo Floresta Estacional Semi Decidual (ITCF,

1987; IBGE, 1992).

O clima é do tipo Cfa ou Sub-tropical Úmido Mesotérmico, caracterizado por apresentar verões quentes

e geadas pouco fregiientes. Apresenta tendência de concentração das chuvas nos meses de verão, sem estação

seca definida (MAACK, 1981). A temperatura média do mês mais quente é superior a 24ºC e atemperatura média

do mês mais frio é inferior a 15 °C; o trimestre mais chuvoso (dezembro a fevereiro) apresenta precipitações

médias de 450 mm e o menos chuvoso (junho a agosto) de 250 mm (PARANÁ, 1978).

A vegetação atualmente existente no Parque é constituída, em sua grande parte (93%), por uma floresta

secundária regenerada a partir do abandono de uma área agrícola e urbana, ocupada durante quase um século,

até aproximadamente o ano de 1630. A partir de então, a vegetação desenvolveu-se em uma floresta com

características fisionômicas semelhantes às florestas primárias deste tipo florestal (ITCF, 1987). Até recente-

mente (20 a 60 anos atrás) ainda usava-se parte desta área para a agricultura e como horto florestal, de modo que

hoje existem duas áreas de vegetação secundária em adiantado estágio sucessional no interior do Parque, mas

com características fisionômicas distintas da anterior. Esses dois ambientes serão doravante denominados,

respectivamente, floresta e capoeirão.

Foram conduzidas 47 fases de campo, com duração média de quatro dias e periodicidade mensal entre

janeiro de 1990 e outubro de 1994, resultando em aproximadamente 1900 horas de coleta de dados. Em cada

contato com a espécie foram registrados: dia, hora, local, ambiente, estrato vertical, número de indivíduos,

comportamento e tipo de contato (visual ou auditivo). Por contato auditivo entenda-se aquele em que se constatou

um ou mais indivíduos produzindo um som vocal ou instrumental (ruflar de asas), mas não foram observados.

Para relacionar o número de contatos com o ciclo sazonal e circadiano da espécie, esses foram

confrontados em cada classe de horário (30 minutos) e em cada mês, com o número de períodos de observação

efetuados nos mesmos, obtendo-se uma razão. Isto foi necessário porque o número de períodos de observação

não era constante para cada classe de horário ou para cada mês. Para facilitar a localização dos pontos de contato,

todos os transectos percorridos foram codificados a cada 50 m, possibilitando uma contagem do número de

intervalos contidos nos dois principais ambientes. Assim, dos 210 intervalos, 183 (87,1%) localizam-se na

floresta e 27 (12,9%) no capoeirão.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Número de contatos. Verificou-se 372 contatos visuais ou auditivos. Analisando a

razão entre o número de contatos efetuados por mês e o número de períodos de observação

constatou-se que houve uma maior quantidade de contatos no período de outubro a janeiro,

o que deve refletir um aumento da atividade nesses meses (tab. I). Porém, nesses meses

os indivíduos procuravam frutos em locais de fácil visualização, o que poderia estar

causando este aumento. Para verificar essa hipótese, descontou-se do número total de

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

Análise quali-quantitativa do comportamento de Penelope... 89

contatos/mês aqueles em que os indivíduos foram vistos consumindo frutos e calculou-

se novamente a razão de contatos. Assim, a razão de contatos manteve-se alta nos meses

do outubro a janeiro, o que deve guardar relação com-o aumento da atividade no período

reprodutivo.

A aplicação de um teste baseado em uma estatística qui-quadrada revelou que as

variações das razões 1 e 2 ao longo dos meses são significativas (p < 0,005).

Tabela. Razão (1) entre o número de contatos mensais efetuados comPenelope superciliaris no Parque Estadual

de Vila Rida do Espírito Santo, Fênix, PR, de janeiro de 1990 a outubro de 1994 e o número de períodos de

observação (30 minutos). A razão 2 representa a razão entre o número de contatos, descontados aqueles em que

a espécie estava forrageando, e os mesmos períodos de observação.

MESES PERÍODOS CONTATOS RAZÃO I ALIMENTAÇÃO DIFERENÇA RAZÃO 2

jan 337 39 11,6 6 33 9,8

fev 319 22 6,9 4 18 5,6

mar 327 19 5,8 - 19 5,8

abr 311 20 6,4 1 19 6,1

mai 287 15 52 Ê 15 52

jun 349 21 6,0 2 19 5,4

jul 357 28 7,8 - 28 7,8

ago 393 30 7,6 3 27 6,9

set 367 30 8,2 10 20 5,4

out 335 48 14,3 10 38 11,3

nov 365 61 16,7 a2: 38 10,4

dez 287 39 13,6 10 29 10,1

A espécie é mais ativa e, portanto, mais fregüentemente contatada no início da

manhã (tab. II). Os períodos compreendidos entre 4h30min - 6h e 18h-20h apresentam

altas frequências de contatos; como nesses períodos o esforço de amostragem foi muito

inferior aos demais, a razão entre o número de contatos e o número de períodos de

observação não foi calculada. Porém, os valores obtidos, respectivamente, para as classes

imediatamente posteriores e anteriores, sugerem a existência de dois picos de atividade:

o principal compreendido entre o amanhecer e as 7h e o secundário das 18h até o anoitecer.

Este é, de fato, o padrão de atividade da maior parte das aves diurnas. O pico de atividade

da manhã deve estar relacionado com uma busca mais intensa de alimento e o da tarde com

a de um local adequado para o repouso (SICK, 1985).

Ocupação do espaço. Dos 372 contatos, 355 foram considerados para a análise de

ocupação do espaço. Desses, 271 (76,3%) foram feitos na floresta e 84 (23,7%) no

capoeirão. Considerando-se a proporção de pontos definidos na floresta (87,1%) e no

capoieräo (12,9%) verifica-se que a proporção de contatos efetuados no capoeirão

(23,7%) foi praticamente o dobro do esperado (ou seja, a proporção de pontos definidos

no capoeirão ou 12,9%) se a espécie ocupasse indistintamente os dois ambientes. Para

verificar se foi a busca de alimento que causou este aumento, isolou-se aqueles contatos

envolvendo forrageamento nos dois ambientes. Assim, dos 271 contatos efetuados na

floresta, 38 (14,0%) envolviam o consumo de frutos e dos 84 realizados no capoeirão, 32

(38,1%) envolviam esta atividade. Logo, é principalmente a busca de recursos alimentares

que leva a espécie a ocupar o capoeirão.

TEIXEIRA & ANTAS (1981) registraram que P. superciliaris sobrevive em áreas

reflorestadas adjacentes a centros urbanos e em pequenos fragmentos florestais cercados

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

90 MIKICH

Tabela II. Razão entre o número de contratos efetuados com Penelope superciliaris no P.E. Vila Rica, Fênix,

PR, no período de janeiro de 1990 a outubro de 1994 e o número de períodos de observação em cada classe de

horário (30 minutos). (* Razão não calculada para períodos com baixa amostragem).

HORÁRIO PERÍODOS CONTATOS RAZÃO

04:30 - 05:00 2 1 *

05:00 - 05:30 19 5 *

05:30 - 06:00 62 29 *

06:00 - 06:30 115 48 41,7

06:30 - 07:00 158 47 29,7

07:00 - 07:30 176 26 14,8

07:30 - 08:00 182 DR) 12,1

08:00 - 08:30 185 13 7,0

08:30 - 09:00 186 18 9,7

09:00 - 09:30 185 15 8,1

09:30 - 10:00 182 11 6,0

10:00 - 10:30 179 10 5,6

10:30 - 11:00 176 12 6,8

11:00 - 11:30 175 5 2,9

11:30 - 12:00 169 7 4,1

12:00 - 12:30 138 5 3,6

12:30 - 13:00 126 6 4,8

13:00 - 13:30 138 9 6,5

13:30 - 14:00 145 10 6,9

14:00 - 14:30 162 9 5,6

14:30 - 15:00 167 8 4,8

15:00 - 15:30 170 11 6,5

15:30 - 16:00 165 5 3,0

16:00 - 16:30 160 4 2,5

16:30 - 17:00 151 8 5,3

17:00 - 17:30 135 7 ss)

17:30 - 18:00 109 9 8,3

18:00 - 18:30 62 6 *

18:30 - 19:00 39 4 *

19:00 - 19:30 14 2 *

19:30 - 20:00 2 - *

por pastagem ou campos cultivados, podendo inclusive cruzá-los caminhando. DELACOUR

& AMADON (1973) e TEIXEIRA & ANTAS (1981) apontaram os espécimes do gênero

Penelope como mais resistentes às alterações do que os dos gêneros Crax Linnaeus, 1758

e Pipile Bonaparte, 1856, mas isto não significa que os primeiros possam viver fora de

ambientes florestais. De fato, P. superciliaris demonstrou ter forte dependência da

floresta para abrigo e alimentação. Isto ressalta a importância da manutenção dos

fragmentos florestais para a conservação da biodiversidade e dos processos biológicos, já

que é nesses fragmentos e a partir deles que alguns cracídeos e outros fazem a dispersão

das sementes, contribuindo para a recuperação da composição florística.

Para analisar a preferência por estrato vertical foram utilizados 198 registros, todos

eles do tipo visual: em 69 (34,8%) contatos, os indivíduos estavam no solo ou próximo

dele, em 51 (25,8%) no estrato médio e em 78 (39,4%) no superior, indicando que todos

os estratos são ocupados, embora a espécie deve realizar algumas atividades diferenciadas

em cada um deles.

DELACOUR & AMADON (1973) afirmaram que Penelope é principalmente

arbóreo e acreditam queP. superciliaris desce pouco ao solo, provavelmente comparando-

a com mutuns, que são principalmente terrícolas (NARDELLI, 1993). A ampla utilização

vertical do ambiente parece estar diretamente relacionada à anatomia dos jacus (Penelope

spp.). As pernas e os pés são grandes e fortes e os dedos são longos, sendo o hálux bem

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

Análise quali-quantitativa do comportamento de Penelope... 91

desenvolvido e situado no mesmo plano que os dedos anteriores (SICK, 1985), permitindo

que se desloquem bem no solo, caminhando, e também na ramagem, apesar do seu peso.

A possibilidade de ocupar diferentes estratos contribui para a diversificação da dieta,

facilitando a sobrevivência da espécie, mesmo em períodos com baixa disponibilidade de

recursos.

Tamanho dos grupos. Para verificar qual o número de indivíduos usualmente

observado/contato e, principalmente, se este número sofria variações ao longo do ano,

foram considerados 270 registros. Na área, a espécie é normalmente encontrada só um em

duplas, sendo essas mais fregiientes entre setembro e dezembro (tab. III). Os contatos

efetuados com mais de dois indivíduos foram obtidos no segundo semestre, principalmen-

te em julho e agosto, provavelmente guardando relação com a antecipação do período

reprodutivo.

Tabela III. Relação entre o período do ano e o número de indivíduos / grupo de Penelope superciliaris no Parque

Estadual Vila Rica do Espírito Santo, Fênix, PR, de janeiro de 1990 a outubro de 1994.

NÚMERO DE INDIVÍDUOS POR GRUPO

MESES 1 2) 3 4 >4

jan. 28 6 -

fev. 9 5 -

mar. 11 3 -

abr. 8 3 -

maio 8 - -

jun. 5 4 -

jul. 9 7 1 1

ago. 8 7 2 1 1

set. 6 14 -

out. 13 21 1

nov. 22 31

dez. 14 21

Segundo DELACOUR & AMADON (1973) os jacus e jacutingas são normalmente

encontrados em pares ou famílias. PACCAGNELLA et al. (1994) verificaram que Pepile

Jacutinga Spix, 1825 anda em grupos com até seis indivíduos, sendo mais comum o

contato com pares durante os meses de setembro a novembro.

Alarme e fuga. Bastante arredia, não permite a aproximação humana. Quando

ocorre, a ave geralmente voa para o estrato superior (caso já não estivesse aí) e para o

interior da floresta (menos de 50 metros de onde estava) buscando uma árvore com copa

cerrada onde oculta-se com alguns passos silenciosos pela ramagem. A fuga é normalmen-

te acompanhada de intensa vocalização, o que denuncia a sua presença. Entretanto, ao

ocultar-se geralmente silencia totalmente, tornando quase impossível a sua localização.

Quando a ave está menos alarmada emite pios, enquanto abre e fecha constantemente a

cauda. A medida que a excitação aumenta, elevam-se também a freqiiência e a intensidade

da vocalização e a ave movimenta-se muito, até voar. É em momentos de grande excitação

que a crista é eriçada.

Segundo DELACOUR & AMADON (1973), os cracídeos, quando alarmados,

podem voar em silêncio ou com muito ruído, sendo perceptível a inquietação crescente das

aves, inclusive o abrir e fechar das retrizes. SICK (1985) comentou que esse comportamen-

to é um claro sinal de excitação, sobretudo nos jacus e mutuns e PACCAGNELLA et al.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

92 MIKICH

(1994) verificaram que Pipile jacutinga também exibe este comportamento, embora não

seja de fato uma espécie muito arredia. Embora os jacus não tolerem a proximidade

humana como as jacutingas, que podem ser facilmente caçadas, o ruído que fazem ao fugir

denuncia sua localização, o que deve estar constribuindo para o declínio de suas

populações. A reação da espécie perante a presença humana recomenda que nos fragmen-

tos onde ocorra a visitação, ela seja mínima ou restrita a algumas áreas, como é o caso do

P.E. Vila Rica.

Comportamento agressivo. Embora não tenha sido propriamente observado, em

duas ocasiões (4.VIII. 1990e 3.X1.1991) vocalizações agressivas foram emitidas por mais

de uma ave. Tais vocalizações eram intensas e, na primeira ocasião, acompanhou uma

intensa movimentação da ramagem, sugerindo um confronto físico direto entre os

indivíduos; na segunda, em uma área de capoeirão, as vocalizações também foram

intensas, mas não foi possível verificar se houve confronto físico ou não. Nessa ocasião as

aves deveriam estar no solo ou a pouca altura deste. O único relato sobre esse tipo de

comportamento foi feito por SICK (1970) entre machos deCrax blumenbachii Spix, 1825.

Ruflar de asas. É um som instrumental produzido devido a uma modificação nas

primárias externas e assume vários graus (SICK, 1985), alterando o tom e a qualidade do

som (DELACOUR & AMADON, 1973). Segundo VAURIE (1968) esta modificação,

que só ocorre entre os Penelopini, não é muito acentuada nos representntes do gênero

Penelope, porém, P. superciliaris apresenta o maior grau de modificação das primárias

(DELACOUR & AMADON, 1973), embora SICK (1985) comente que essa espécie exibe

a ruflar de asas com menos frequência que outros representantes da família. O som

instrumental foi constatado em várias ocasiões, geralmente nas primeiras horas da manhã

(tab. IV) nos meses de maio a outubro (tab. V), coincidindo com o apresentado por

DELACOUR & AMADON (1973) e SICK (1985).

Embora tenha sido amplamente constatado auditivamente, em apenas uma ocasião

(10.VII.1992) foi possível observar as aves realizando tal comportamento. Após ouvir

várias vezes o som do ruflar de asas, produzido por várias aves, a julgar pela distribuição

espacial do mesmo, observou-se um indivíduo cruzando e estrada interna do Parque,

voando. Mais ou menos no meio do trajeto a ave "forçou" o vôo, produzindo um som

Tabela IV. Fregiiência de manifestação do ruflar de asas de Penelope superciliaris no P.E. Vila Rica, Fênix, PR,

no período de janeiro de 1990 a outubro de 1994, em relação ao horário. (* Classes de horário reunidas porque

tiveram ausência de registros de ruflar de asas.)

HORÁRIO CONTATOS TOTAL RUFLAR DE ASAS FREQUÊNCIA RELATIVA (%)

04:30 - 05:00 1 1 100,0

05:00 - 05:30 5 3 61,0

05:30 - 06:00 29 11 37,9

06:00 - 06:30 48 12 25,0

06:30 - 07:00 47 16 34,0

07:00 - 07:30 26 2 Ten

07:30 - 08:00 22 1 4,5

08:00 - 08:30 13 - E

08:30 - 09:00 18 1 5,6

09:30 - 17:30* 142 3 =

17:30 - 18:00 3 1 tail

18:00 - 18:30 6 1 16,7

18:30 - 20:00* 6 = E

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

Análise quali-quantitativa do comportamento de Penelope... 93

Tabela V. Fregiiência de manifestação do ruflar de asas de Penelope superciliaris no Parque Estadual de Vila

Rica do Espírito Santo, Fênix, PR, de janeiro de 1990 a outubro de 1994.

MESES CONTATOS TOTAL RUFLAR DE ASAS FREQUÊNCIA RELATIVA (%)

Jan. 39 1 2,6

fev. 22 1 4,5

mar. 19 1 I

abr. 20 1 5,0

maio 15 2 13,3

jun. 21 5 23,8

E 28 10 3347

ago. 30 4 13,3

set. 30 10 21812)

out. 48 8 16,7

nov. 61 4 6,6

dez. 39 2 Sl

característico que lembra rítmicas em um tambor, em duas sessões, que pode ser ouvido

a dezenas de metros, e depois pousou normalmente. No local havia seis ou mais aves, que

voavam de um lado para o outro, às vezes em silêncio e às vezes produzindo som. Muitos

indivíduos vocalizavam (assovios). Em um momento uma ave cruzou a estrada ruflando

as asas no meio do trajeto. Seu (ua) companheiro (a) ficou por alguns instantes no outro

lado da estrada vocalizando e nitidamente inquieto. Seguiu-o, então, mas sem produzir

qualquer ruído. Pouco depois cruzaram novamente a estrada, ambos em silêncio. Aos

poucos as aves foram se afastando do local e o ruflar de asas tornou-se menos e menos

frequente, até que cessou.

DELACOUR & AMADON (1973) apresentaram uma ótima descrição deste

comportamento, que não é mais registrado apesar da sua alta frequência, devido ao horário

de manifestação. Acreditam que sirva para reforçar os laços do casal, sendo realizado pelo

macho, e que tenha pouca ligação com a territorialidade. De fato, as rêmiges modificadas

são mais alongadas e com o formato falciforme mais acentuado nos machos (Fernando C.

Straube in litt). No relato anteriormente apresentado, apenas uma ave foi vista realizando

o ruflar de asas, mas a baixa intensidade luminosa e a pouca diferença de tamanho

(aproximadamente 5%) entre os sexos, não permitiram, verificar esta diferenciação.

Também não há provas de que apenas uma das aves o tenha feito. A presença de várias aves

reunidas em um mesmo local poderia implicar uma forma de exibição relacionada ao

período reprodutivo, mas não explicaria a manifestação deste comportamento em outras

épocas do ano, embora com menor fregüencia. DELACOUR & AMADON (1973)

perceberam que existe um estímulo em cadeia e isto de fato parece ocorrer, pois

dificilmente ouviu-se uma única ave ruflando as asas, levando a crer que essa exibição

esteja mais relacionada à territorialidade do que à manutenção dos laços do casal. Com a

produção desse som instrumental as aves (só os machos?) estariam indicando a localização

e os limites dos seus territórios, que seriam mais ativamente mantidos durante o período

reprodutivo do que no resto do ano. A reunião de várias aves na ocasião citada não parece

acontecer sempre e talvez tenha ocorrido no limite territorial de algumas aves, onde deve

ocorrer uma maior fregiiência de demonstrações.

Comportamento reprodutivo. Comportamentos que devem estar diretamente rela-

cionados à reprodução da espécie foram observados em quatro ocasiões (29.VII.1991;

31.VIl. 1991; 2.X1.1991 e 3.XTI.1993) e enquadram-se no provável período reprodutivo

da espécie na área de estudo (agosto-setembro a fevereiro-março). Na primeira ocasião,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

94 MIKICH

foram observadas três aves no solo, na estrada interna do Parque. Tinham a cauda um

pouco elevada e semi-aberta e a crista eriçada. Perseguiam-se e emitiam vocalizações

curtas e graves. Por um instante pararam e pareciam ter notado a presença do observador.

Uma delas, a que emitia mais vocalizações, bateu as asas duas vezes sem sair do solo, abriu

acauda em leque e, caminhando, arrastou-a no solo. A outra fazia o mesmo que esta quando

o terceiro indivíduo voou para uma árvore na beira da estrada. Uma das que ficou no solo,

dirigiu-se para o observador vocalizando, enquanto abria e fechava a cauda. A outra ave

juntou-se àquela na árvore e logo as duas voltaram ao solo, sendo a que já estava na árvore

a primeira a descer. A que a seguiu abriu as asas, deu duas leves batidas com estas e voltou

a arrastar a cauda em leque. Depois de algum tempo, o indivíduo que vinha na direção do

observador, caminhando rapidamente, fugiu para o interior da floresta, mas os outros dois

permaneceram no local. Observou-se, então, que a ave que realizava as exibições era

maior, provavelmente trata-se de um macho. Mesmo quando esta ave tomava a dianteira,

o comportamento de elevar e bater as asas e de arrastar a cauda era mantido. O intervalo

entre as elevações das asas em quatro ocasiões consecutivas foi de 22,22, 19e 9 segundos,

respectivamente. Em um momento o espécimen menor voou para uma arvoreta na beira

da estrada e o outro continuou com sua exibição no solo por alguns instantes, antes de

juntar-se a ele. Quando a ave menor voou para o interior da floresta a outra imediatamente

seguiu-a. Poucos minutos mais tarde ouviu-se várias vezes o som do ruflar de asas no local.

Dois dias mais tarde, no mesmo local, observou-se um indivíduo descer ao solo.

Imediatamente outro (maior) fez o mesmo e passou a perseguí-lo com a cauda semi-aberta.

Voltaram para o interior da floresta. Na terceira ocasião, duas aves foram observadas

cruzando rapidamente a mesma estrada. A ave maior novamente parecia estar perseguindo

a menor. Na quarta ocasião, o comportamento observado foi distinto. Este parecia

demonstrar um relacionamento mais estreito entre dois indivíduos aparentemente adultos

que ocupavam pousos distintos, mas bastante próximos. Um dos indivíduos emitia uma

vocalização suave (pio) e o outro emitia vocalizações curtas e graves, enquanto abaixava

e levantava ligeiramente a cabeça como se apontasse insistentemente para um local com

o bico, e movimentava ligeriramente as asas junto ao corpo. Depois disso, dirigiram-se

para uma árvore frutífera [Cabralea canjerana (Vell.) Mart., Meliaceae] onde buscaram

frutos.

DELACOUR & AMADON (1973) afirmaram que o casal de Ortalis sp. desce ao

solo, o macho caminha na frente da fêmea com a cabeça elevada e vocalizando. Ocorrem

perseguições da fêmea pelo macho. Um macho (?) de Penelopina sp. citado por esses

autores ficava rodando em volta de si mesmo e, aparentemente, ficou tão surpreso e

confuso com a presença do observador, que correu na sua direção antes de fugir, tal como

o fez um dasP. superciliaris observadas no presente estudo. Segundo os mesmos autores,

em Crax existe um padrão mais complexo, com várias posturas e sons. O bater das asas

faz parte da exibição. SICK (1970) observou perseguição no solo de uma fêmea por um

macho deC. blumenbachii Spix, 1825. Este autor acredita que a cópula ocorra nas árvores,

uma vez que a fêmea sobe até elas e o macho a persegue. SICK (1985) comentou que o

macho desta espécie "varre" o chão com a cauda. Percebe-se que vários comportamentos

ou posturas apresentados como parte da corte de P. superciliaris repetem-se ou encontram

similares em outras espécies da família.

Para o comportamento observado na quarta ocasião, porém, não se encontrou

qualquer menção para a família. Entretanto, ele pode ser comparado ao exibido por

pombos (Columba livia Gmelin, 1789) junto ao local de nidificação, lembrando ainda o

comportamento de um indivíduo jovem pedindo alimento. A vibração das asas na corte é

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

Análise quali-quantitativa do comportamento de Penelope... 95

um comportamento que serve para pedir alimento e pode ser manifestado mesmo em

espécies que não realizam alimentação nupcial (ANDREW, 1961), embora em cracídeos

ela ocorra segundo SICK (1985).

Agradecimentos. À CAPES, Manomet Bird Observatory, Wilson Ornithological Society, International

Council for Bird Preservation - U. S. Section, Wildlife Conservation International e World Nature Association

pelo suporte financeiro; a Sociedade de Pesquisa em Vida Selvagem e Educação Ambiental pelo apoio

administrativo e ao Instituto Ambiental do Paraná pelo uso das dependências do Parque. À Aderlene Inês de Lara

(SPVS), Fernando Costa Straube e Pedro Scherer Neto (MHNC), que contribuíram com bibliografia e valorosas

críticas e sugestões ao manuscrito; ao Prof. Sandro Menezes da Silva (UFPR) que corrigiu os termos botânicos;

à equipe do Laboratório de Estatísitica da UFPR pela revisão das análises quantitativas; a Washington de

Carvalho Júnior pelo auxílio no último ano de coleta de dados e a dois revisores anônimos pelas correções e

sugestões.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ANDREW,R. J. 1961. The displays given by passerines in courtship and reprodutive fighting: a review. Ibis,

London, 103a: 315 - 348.

BERNARDES, A. T.; MACHADO, A. B. M. & RYLANDS, A. B. 1990. Fauna brasileira ameaçada de

extinção. Belo Horizonte, Fundação Biodiversitas para a Conservação da Diversidade Biológica. 62p.

COLLAR, N. J. & GONZAGA, L. P. 1988. Cracid species at risk: the global perspective. In: SIMPOSIO

INTERNACIONAL SOBRE LA BIOLOGIA Y CONSERVACION DE LA FAMILIA CRACIDAE. 2.

Caracas, Mem. ..., FUDENA. p. 53-57.

COLLAR, N. J.; GONZAGA, L. P.; KRABBE, N. et al. 1992. Threatened birds of the Americas: the ICBP/

IUCN Red Data Book. Cambridge,International Council for Bird Preservation. 1150p.

DELACOUR, J. & AMADON, D. 1973. Curassows and related birds. New York, American Museum of

Natural History, 247p.

FUNDAÇÃO INSTITUTO BRASILEIRO DE GEOGRAFIA E ESTATÍSITCA. 1992. Manual técnico da

vegetação brasileira. Rio de Janeiro. 92 p. (Série Manuais Técnicos em Goeciências, 1).

INSTITUTO DE TERRAS CARTOGRAFIA E FLORESTAS. 1987. Plano de manejo do Parque Estadual

de Vila Rica do Espírito Santo, Fênix, PR. Curitiba. 86p.

MAACK, R. 198. Geografia física do Estado do Paraná. 2 ed. Rio de Janeiro, J. Olympio, Secretaria Cultura

Esportes Governo Estado do Paraná. 450p.

NARDELLI, P. M. 1993. A preservação do Mutum-de-Alagoas, Mitu mitu. Nilópolis, Zöobotänica Mário

Nardelli, 251 p.

PACCAGNELLA, S. G.; ANTONELLI-FILHO, R.; LARA, A. I. de & NETO, P. S. 1994. Observações sobre

Pipile jacutinga Spix, 1825 (Aves, Cracidae) no Parque Estadual de Carlos Botelho, São Paulo, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (76): 29 - 32.

PARANÁ. 1978. Cartas climáticas do Estado do Paraná. Londrina, Instituto Agronômico do Paraná, 38 p.

SILVA, J. L. & STRAHL, S. D. 1991. Human impact on populations of chachalacas, guans and curassows

(Galliformes: Cracidae) in Venezuela. In: ROBINSON, J. G. & REDFORD, K. H. eds., Neotropical

wildlife use and conservation. Chicago, University of Chicago. p.37-52.

SICK, H. 1970. Notes on brazilian Cracidae. Condor, Lawrence, 72: 106-108.

— . 1985. Ornitologia Brasileira, uma introdução. Brasília, Universidade de Brasília. v. 1. 481p.

SICK, H. & TEIXEIRA, D. M. 1979. Notas sobre aves raras ou ameaçadas de extinção. Publções avuls. Mus.

nac., Rio de J., Rio de Janeiro, 62: 1-39.

TEIXEIRA, D. M. & ANTAS, P. T. Z. 1981. Notes on endangered brazilian Cracidae. In: SIMPOSIO

INTERNACIONAL SOBRE LA BIOLOGIA Y CONSERVACION DE LA FAMILIA CRACIDAE. 1.

Morelos. Mem. ... Univ. Nac. Aut. de México, Fac. de Med. Vet. y Zootec. p. 176-186.

TERBORGH, J. 1986. Keystone plant resources in the tropical forest. In: SOULÉ, M. E. ed., Conservation

biology: the science of scarcity and diversity. Sunderland, Sinauer Associates. p. 330 - 344.

VAURIE, C. 1968. taxonomy of the Cracidae (Aves). Bull. Am. Mus. nat. Hist., New York, 138 (4): 135-259.

Recebido em 23.01.1995; aceito em 20.11.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):87-95 , 04 out. 1996

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O FATOR DE CONDIÇÃO E ÍNDICE HEPATOSSOMÁTICO COMO INDI-

CADORES DO PERÍODO DE DESOVA DE ASTYANAX FASCIATUS DA

REPRESA DO LOBO, SÃO PAULO (OSTEICHTHYES, CHARACIDAE)

Geraldo Barbieri!

Sandra Maria Hartz?

José Roberto Verani?

ABSTRACT

THE CONDITION FACTOR AND HEPATOSOMATIC INDEX AS AN INDICATORS OF THE

SPAWNING OF ASTYANAX FASCIATUS AT LOBO RESERVOIR, SÃO PAULO (OSTEICHTHYES,

CHARACIDAE). Females of Astyanax fasciatus (Cuvier, 1819) were caught at the Lobo reservoir, São Paulo,

Brazil, from February 1991 to January 1992, and the condition factor and hepatosomatic index fluctuations were

related with the gonadal development. The condition factor flutuations, estimated with and without gonads (01 and

62) were analyzed in relation to the flutuations of the gonadosomatic index. The mean values of Q1 and 42 have a

similar evolution but there are some periods in which AQ (01 -42) appears higher. So, the AQ (gonad condition) can

beused as an indicator of the spawning period for A. fasciatus. The fluctuation of the hepatosomatic index suggests

that the hepatic depletion occurs during the ovocyte maturation period.

KEYWORDS. Condition factor, hepatosomatic index, Astyanax fasciatus, Brazil.

INTRODUÇÃO

Astyanax fasciatus (Cuvier, 1819), popularmente conhecida como "lambari do rabo

vermelho”, é uma espécie forrageira que ocupa importante lugar na cadeia alimentar do

"ecossistema Broa” (represa do Lobo) e é muito apreciada na pesca esportiva. Ocorre

desde a América Central até a Argentina (STERBA, 1973). Na represa do Lobo,

localizada na região central do Estado de São Paulo, esta espécie é muito abundante.

Objetivou-se analisar a variação do fator de condição e do índice hepatossomätico

em função do desenvolvimento gonadal de Astyanax dasciatus da represa do lobo (São

Paulo).

l. Programa de Pós-graduação em Ecologia e Recursos Naturais, Universidade Federal de São Carlos, Caixa Postal 676, CEP 13.565-

905, São Carlos, São Paulo, Brasil.(Auxílio CNPq).

2. Departamento de Ecologia, Instituto de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Av. Bento Gonçalves, 9500, CEP 90.540-000,

Porto Alegre, Rio Grande do Sul, Brasil.

3. Departamento de Hidrobiologia, Universidade Federal de São Carlos, Caixa Postal 676, CEP 13.565-905, São Carlos, São Paulo, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 97-100, 04 out. 1996

98 BARBIERI; HARTZ & VERANI

MATERIAL E MÉTODOS

As amostragens deAstyanaxfasciatus foram realizadas mensalmente na represa do Lobo (SP), no período

de fevereiro/91 a janeiro/92, obtendo-se um total de 699 fêmeas (alguns exemplares foram fixados e estão

depositados no Departamento de Hidrobiologia da Universidade Federal de São Carlos). De cada exemplar foram

registradas as seguintes variáveis: comprimento total (Lt), em cm; peso total (Wt), peso da gônada (wg) e peso do

fígado (wf). Os estádios de maturação gonadal foram definidos segundo escala apresentada para a espécie em

BARBIERletal. (1982) erevisada por BARBIERI & BARBIERI (1988). A época de desova foi definida através

da análise da variação bimestral dos valores do índice gonadossomático médio (lg), após constatação de

relação linear pela origem entre as variáveis envolvidas (BARBIERI et al., 1982). A equação do índice foi

representada por: lg= (wg/Wt).100, calculada para cada exemplar.

Ofator de condição, parâmetro da relação peso/comprimento, foi estimado segundo metodologia apresen-

tadaem RICKER (1971)e discutidaem SANTOS (1978), VAZZOLER (1981)e BARBIERI & VERANI (1987).

Esse fator foi calculado e analisado, separadamente, considerando-se as seguintes condições: com o peso do ovário

(01=Wt/Ltº) e sem o peso do ovário (62=wt/wg)/Lt®). Com os valores médios de 01 e42 foram elaborados gráficos

que mostraram suas variações em função do tempo. Para verificar a influência do peso do ováriono fator de condição,

foram estimados os valores de Ad, definido pela diferença entrep 1 eG2 e denominado "condição gonadal". O índice

hepatossomático (Ihs) foi calculado, para cada fêmea, através da equação: Ihs=wf/Wt, após constatação de relação

linear pela origem entre as variáveis envolvidas. Essa relação foi analisada considerando-se as seguintes situações:

fêmeas em início de maturação gonadal (wf ) e em avançado estágio de maturação (wf,). Os valores médios dos

índices gonadossomäticos (lg) e hepatossomático (Ihs), do fator de condição (Q1 e 42) e da condição gonadal foram

lançados em gráficos,em função dos bimestres.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

A variação bimestral dos valores médios do índice lg (fig. 1) revela que as fêmeas

de A. fasciatus da represa do Lobo apresentam período de desova longo, revelando maior

atividade reprodutiva no bimestre outubro-novembro a dezembro-janeiro. O fator de

condição (fig. 2) pode ser considerado como indicador do período de desova e o ovário

mantém significativa influência nos valores deste fator, como pode ser evidenciado

através da análise da variação da condição gonadal. Os valores médios do índice

hepatossomático (fig. 3) aumentam no bimestre junho-julho, considerado como sendo o

período de início de maturação gonadal (BARBIERI & BARBIERI, 1988), e decrescem

até o bimestre outubro-novembro quando ocorre a maturação final e desova. A relação

entre peso do fígado/peso da fêmea é apresentada na fig. 4, considerando-se as seguintes

situações: fêmeas em início de maturação (wf ) e final de maturação (wtf).

O fator de condição tem sido amplamente incorporado a modelos matemáticos

aplicados à Biologia e como medida do estado fisiológico do peixe. LE CREN (1951)

relata as variações que o fator pode apresentar durante o ciclo sexual, enquanto que

MacGREGOR (1959) destaca que as condições alimentares têm papel preponderante nas

alterações desse fator. Estudos sobre alimentação de A. fasciatus da represa do Lobo

(BARBOSA, 1982) sugerem que a espécie pode ser classificada como eurifágica, uma vez

que utiliza na alimentação uma grande variedade de ítens, principalmente fito e

zooplâncton. A estabilidade das populações destes microorganismos na represa do Lobo

foi amplamente discutida por MATSUMURA-TUNDISI & TUNDISI (1976), o qual

demonstrou que esses itens alimentares estão disponíveis para a espécie em estudo

durante todo o ano. Em A. fasciatus, verifica-se que o fator de condição está diretamente

relacionado com o desenvolvimento gonadal do peixe. Comportamento semelhante tem

sido relatado para espécies tanto marinhas como de água-doce, como por exemplo, os

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):97-100, 04 out. 1996

O fator de condição e índice hepatossomático como indicadores ... 99

trabalhos de ISAAC-NAHUM & VAZZOLER (1983) para Micropogonias furnieri

(Demarest, 1823) e HARTZ & BARBIERI (1993), para Cyphocharax voga (Hensel,

1869). No entanto, VAZZOLER & VAZZOLER (1965) observaram comportamento

inverso com relação a população de Sardinella aurita (Cuv. & Val., 1847) na costa centro-

sul do Brasil. Para esta espécie, os valores mínimos do fator são encontrados em peixes

maduros e máximos em peixes imaturos.

AGOSTINHO (1985) constatou, para Rhinelepis aspera (Agassiz, 1829), uma

redução progressiva nos valores médios do fator de condição e índice hepatossomático,

durante o período de maturação gonadal, atingindo valores mínimos durante a reprodu-

ção. Este autor relata que, em R. aspera, não apenas o processo reprodutivo, mas também

a vitelogênese leva as reservas orgânicas à depleção. Segundo DAHLBERG (1969),

peixes que apresentam este comportamento mobilizam não só as reservas lipídicas

hepáticas, mas também as reservas musculares e subcutâneas para o processo de

maturação. A redução nos valores do fator de condição e índice hepatossomätico, durante

o período de desova, tem sido atribuída às espécies que apresentam hábito de corte,

Ig médio

lhs médio

bimestres 3

4 wf2=0,01559.Wt

FC médio

2,0 6,0 10,0 14,0 18,0

bimestres 2 wt(g)

Figs. 1-4. Astyanax fasciatus da represa do Lobo (SP): 1. variação bimestral dos valores médios do índice

gonadossomático; 2. do fator de condição e 3. do índice hepatossomätico. 4. relação peso do fígado (wtf)

| peso da fêmea (wt) em início (wf,) e final de maturação gonadal (wtf,). (FC1=61; FC2=62; FC1 - FC2 =

Ab).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 97-100, 04 out. 1996

100 BARBIERI, HARTZ & VERANI

migração, construção de ninho e cuidado com a prole (AGOSTINHO, 1985). A espécie

em estudo não se enquadra nesta categoria de peixes e, enquanto os valores do fator de

condição aumentam, os do índice hepatossomático decrescem, atingindo valores míni-

mos no bimestre outubro-novembro, considerado período de maior atividade reprodutiva.

Apesar da diminuição deste índice coincidir com o período de desova, a sua redução não

pode ser atribuída ao processo de maturação gonadal, necessitando portanto, de estudos

mais aprofundados sobre o tema.

Com estes resultados, coclui-se que, em A. fasciatus da represa do Lobo (SP), o

fígado está mais relacionado com a mobilização das reservas energéticas necessárias para

o processo da vitelogênese e que o fator de condição pode ser considerado um bom

indicador do período reprodutivo da espécie.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

AGOSTINHO, A. A. 1985. Estrutura da população, idade, crescimento e reprodução de Rhinelepis aspera

(Agassiz, 1829) (Osteichthyes, Loricariidae) do rio Paranapanema, PR. 231 p. Tese Dout. em Ciências.

Programa de Pós-graduação em Ecologia e Recursos Naturais, Universidade Federal de São Carlos, São Carlos.

[Não publicada].

BARBIERI, G. & BARBIERI, M.C. Curva de maturação, tamanho de primeira maturação gonadal e fecundidade

de Astyanax bimaculatus e A. fasciatus da represa do Lobo, Estado de São Paulo (Osteichthyes,

Characidae).Revta Ceres. Viçosa, 35 (197): 64-77.

BARBIERI, G.; SANTOS,M. V. & SANTOS, J.M. dos. 1982. Época de reprodução e relação peso/comprimento

de duas espécies de Astyanax (Pisces, Characidae). Revta Pesq. Agrop. Bras., Brasília, 17 (7): 1057-1065.

BARBIERI,G. & VERANLJ.R. 1987. O fator de condição como indicador do período de desova em Hypostomus

aff. plecostomus (Linnaeus, 17758) (Osteichthyes, Loricariidae) na represa do Monjolinho (São Carlos, SP).

Ciênc. e Cult., São Paulo, 39 (7):655-658.

BARBOSA, P.M.M. 1982.Predação dos organismos zooplanctônicos peloAstyanax fasciatus Cuvier, 1819

(Osteichthyes, Characidae), na represa do Lobo ("Broa"), São Carlos - SP. 133p. Dissertação de

Mestrado em Ecologia e Recursos Naturais. Programa de Pós-graduação em Ecologia e Recursos Naturais,

Universidade Federal de São Carlos. [Não publicada].

DAHLBERG,M. D. 1969. Fatcycle and condition factors of two species of menhanden,Brevoortia (Clupeidae),

and natural hybrids from Indian river of Florida. Am. Midl. Nat., Notre Dame, 82(1):117-126.

HARTZ, S. M. & BARBIERI, G. 1993. Dinâmica quantitativa da alimentação de Cyphocharax voga (Hensel,

1869) dalagoa Emboaba, RS, Brasil (Characiformes, Curimatide).Comun. Mus. Ciênc. PUCRS, ser. zool.,

Porto Alegre,6:63-74.

ISAAC-NAHUM, V.J. & VAZZOLER, A. E. A. de. 1983. Biologia reprodutiva de Micropogonias furnieri

(Demarest, 1823) (Teleostei, Scianidae). 1. Fator de condição como indicador do período de desova. Bolm

Inst. Oceanogr., São Paulo, 32(1):63-69.

LECREN,E.D. 1951. Thelength-weightrelationship and seasonal cycle in gonad weight and condition in the perch,

Perca fluviatilis. J. Anim. Ecol., Oxford, 20(2):201-219.

Mac GREGOR, J. S. 1959. Relation between fish condition population size in the sardine (Sardinops caerulea).

Fish. Bull., Sacramento, 60(166):215-230.

MATSUMURA-TUNDISI, T. & TUNDISI,J.G. 1976. Plancton studies in alacustrine environment. I. Preliminary

data on zooplankton ecology of Broa Reservoir. Oecologia, New York, 25:265-270.

RICKER, W.E. 1971.Methodsfor assessment offish production in freshwaters. Oxford, Blackwell Sci. Publ.

358p.

SANTOS, E. P. dos. 1978.Dinâmica de populações aplicada à pesca e piscicultura. São Paulo, EDUSP, 129p.

STERBA, G. 1973. Freshwater fishes of the world. New York, TFH Publ. 878p.

VAZZOLER, A. E. A.M. de. 1981. Manual de métodos para estudos biológicos de populações de peixes:

Reprodução e crescimento. Brasília, CNPq, Programa Nacional de Zoologia, 106p.

VAZZOLER,A.E.A.M. de. &VAZZOLER,G. 1965. Relation between condition factor and sexual development

in Sardinella aurita (Cuv. & Val.) Anais Acad. bras. Ciênc., Rio de Janeiro, 37(supl.):353-359.

Recebido em 10.08.1995; aceito em 12.12.1995.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):97-100,04 out. 1996

RELACIONAMENTO DE MÉTODOS DE AGRUPAMENTO POR

CORRELAÇÃO DE MATRIZES DE VALORES COFENETICOS

Rubens Alves da Cunha !

ABSTRACT

RELATIONSHIP OF CLUSTERING METHODS BY CORRELATION OF COPHENETIC MATRI-

CES. Clustering methods are used in order to evaluate their performances using the same data set. The variables

are used in their original scale or trasformed by standardization and the similarity between pairs of OTU’s is

estimated by correlation and taxonomic distance. The resulting similarity matrices are clustered by diferent

methods. The resulting matrices of cophenetic values are correlated and these values rearranged in matricial

form. These matrices are than clustered by UPGMA. The results showed the cases of better agreement between

pairs of clustering methods according to the scale of the variables and to the measure of similarity between pairs

of OTU’s.

KEYWORDS. Cophenetic correlation, Clustering methods, Phenetics.

INTRODUÇÃO

Quando, para uma dada situação experimental uma análise de agrupamento é

indicada, torna-se necessário um procedimento que leve em conta a possibilidade de

escalonamento de variáveis, a consegiiente seleção do coeficiente de semelhança e a

adequação do método de agrupamento. Nesta situação, os dados experimentais são

dispostos em forma matricial do tipo D(n,t) onde n, número de linhas, corresponde a

atributos e t, número de colunas, corresponde às OTU’s (Unidades Taxonômicas

Operacionais), ou seja, elementos que se pretende agrupar. Ocorre que, frequentemente,

os resultados a partir de D(n,t) não são totalmente concordantes. Justifica-se pois um

estudo sobre os resultados proporcionados por diferentes métodos de agrupamento,

considerando-se ainda o escalonamento das n variáveis e a medida da semelhança entre

OTU’s.

Neste projeto, a avaliação dos resultados de agrupamento é feita com base em

correlação das matrizes de valores cofenéticos resultantes da aplicação de diferentes

métodos. A conceituação de correlação cofenética é devida a SOKAL & ROHLF (1962),

como medida da representatividade da matriz de semelhanças entre OTU’s pelo

agrupamento correspondente. As técnicas de agrupamento, em sua grande maioria, estão

descritas em SNEATH & SOKAL (1973), ANDERBERG (1973) e DUNN & EVERITT

(1982).

1, Departamento de Estatística Aplicada e Computacional / IGCE - UNESP, Rio Claro. SP, CEP 13500-230, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):101-104, 04 out. 1996

102 CUNHA

MATERIAL E MÉTODOS

Serviram de suporte ao desenvolvimento deste projeto dados morfométricos de Bombus atratus Franklin -

1913, utilizados por KERR & CUNHA (1990) para a obtenção de estruturas classificatórias, através de análises

de agrupamento e de ordenação. Este conjunto de dados é representado por n=43 variáveis quantitativas

(caracteres), relacionadas em KERR (1987) e t=72 unidades taxonômicas (OTU’s), das quais 23 exemplares

são machos, 27 são fêmeas e 22 são rainhas da espécie.

Para a análise pretendida, as variáveis são utilizadas em sua escala original ou transformadas por

estandardização. A partir destas matrizes são calculados os coeficientes de correlação linear e de distância

taxonômica entre OTU?s. Estas matrizes de semelhanças (72 x 72) são então agrupadas por ligação simples

(SINGL ), ligação completa ( COMPL ), pelo método ponderado ( WPGMA ) e não ponderado ( UPGMA ) de

agrupamento aos pares por médias aritméticas e pelo método ponderado de agrupamento com o recurso das

somas de Spearman ( WPGMS ), quando a semelhança entre OTU’s é medida por correlação linear. Para

semelhança entre OTU’s medida por distância taxonômica, são utilizados os métodos SINGL, COMPL,

WPGMA, UPGMA e os métodos ponderado ( WPGMC ) e não ponderado ( UPGMC ) de agrupamento pela

média de centróides. Em cada caso, uma matriz de valores cofenéticos é obtida. Em seguida, todas as matrizes

de valores cofenéticos são correlacionadas e os resultados reunidos em forma matricial. Estas matrizes são

então submetidas a agrupamento por UPGMA.

RESULTADOS

Do procedimento adotado, resultaram duas matrizes de correlação entre OTU’s,

sendo uma obtida a partir de variáveis em escala original e outra com as variáveis

transformadas por estandardização. Estas matrizes foram submetidas a cinco métodos de

agrupamento, quando a semelhança entre OTU’s foi medida por correlação e a seis

métodos, quando foram estimadas distâncias taxonômicas entre OTU’s. De cada aplicação

de um dos métodos de agrupamento resultou uma matriz de valores cofenéticos.

As matrizes de valores cofenéticos foram então correlacionadas, segundo o

coeficiente de semelhança utilizado; os resultados obtidos dispostos em forma matricial

são os constantes das tabelas I e II, nas quais um R ou um S acrescidos às siglas dos

métodos de agrupamento indicam, respectivamente, variáveis em escala original e

estandardizadas. Na seqgiiência , estas matrizes de correlação (tab. I, II) foram agrupadas

por UPGMA e os fenogramas ilustrativos das inter-relações dos diferentes métodos de

agrupamento são os da figuras 1 e 2. Em 1 0 coeficiente de correlação cofenética é

r=0,90cem2r=0,67.

Tabela I. Matriz de correlação entre matrizes de valores cofenéticos dos diferentes métodos de agrupamento.

Correlação entre todos os exemplares.

SINGLR COMPLR UPGMAR WPGMAR WPGMSR SINGLS COMPLS UPGMAS WPGMAS _WPGMSS

SINGLR 1.000

COMPLR 0.977 1.000

UPGMAR 0.783 0.888 1.000

WPGMAR 0.984 0.999 0,875 1.000

WPGMSR 0.973 0.998 0,899 0.998 1.000

SINGLS 0.445 0.568 0,821 0.550 0.579 1.000

COMPLS 0.497 0.593 0.743 0.579 0.598 0,811 1.000

UPGMAS 0.479 0.602 0.841 0.584 0,612 0.962 0.874 1.000

WPGMAS 0.502 0.619 0.835 0.602 0.628 0,942 0.895 0.994 1.000

WPGMSS 0.492 0,617 0.865 0,599 0,629 0.947 0.830 0.977 0.963 1.000

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):101-104, 04 out. 1996

Relacionamento de métodos de agrupamento por ... 103

DISCUSSÃO

É relativamente comum que, ao serem apresentados os resultados de uma análise

de agrupamento, a ilustração seja feita através de fenogramas, aos quais são associados

os coeficientes de correlação cofenética. Este coeficiente é interpretado como nível de

representatividade da matriz de semelhanças, pois é calculado entre os elementos desta

matriz e os elementos da matriz resultante da aplicação de um método de agrupamento

(matrizes de valores cofenéticos).

Resultados de uma análise de agrupamento podem, e fregüentemente ocorre, levar

a diferentes grupos de OTU’s, dependendo da escala da variável (caráter); do número

deles que, se pequeno proporciona configurações instáveis, da medida de semelhança

entre OTU’s e do método de agrupamento utilizado.

No caso presente, uma comparação específica entre cada par de métodos de

agrupamento pode ser obtida consultando-se uma das tabelas, respeitadas as condições

em que foram obtidas. Por outro lado, os fenogramas ilustram , além dos casos de maior

concordância entre métodos, a estrutura de todo o conjunto. Nota-se que na fig.1 estão

representados dois grandes grupos de métodos, com semelhança próxima de r = 0,60,

reunindo, de um lado, resultados a partir de variáveis em escala original e, de outro, a

partir de variáveis estandardizadas. Internamente, os grupos de métodos se assemelham

em torno de r = 0,85. Na fig. 2 tais agrupamentos não se revelam. Ainda com referência

as figs.1 e 2, pelo menos dois outros aspectos merecem comentários. Quanto ao nível

geral de semelhanças, o fenograma em 1 mostra maior homogeneidade do conjunto de

métodos, o que pode também ser observado pelos resultados reunidos na tabela II. Ainda,

ES SR v & e DS ce da a Sa ING:

(O TALES STILL AISO US TIRSS rare

PSL ES Srs SE

RREO MS SOS Er 5 Ka SSSISSLIESLSISSLE

0,9 0,99

0,8 0,98

07 0,97

0,6 0,96

0,5 1 055 2

Figs. 1-2. Fenogramas (UPGMA) ilustrativos das inter-relações de métodos de agrupamento por correlação

de matrizes de valores cofenéticos.1 ) Correlação entre OTU’s. Correlação cofenética r = 0,90. 2 ) Distância

taxonômica entre OTU’s. Correlação cofenética r= 0,67.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):101-104, 04 out. 1996

104 CUNHA

Tabela II. Matriz de correlação entre matrizes de valores cofenéticos dos diferentes métodos de agrupamento.

Distância taxonômica entre todos os exemplares.

SINGLR COMPLR UPGMAR WPGMAR UPGMCR WPGMCR SINGLS COMPLS UPGMAS WPGMAS UPGMCS WPGMCS

SINGLR 1.000

COMPLR 0.977 1.000

UPGMAR 0.994 0.994 1.000

WPGMAR 0,990 0.979 0.988 1.000

UPGMCR 0.994 0.993 0,999 0.987 1.000

WPGMCR 0.978 0.933 0,959 0.966 0.959 1.000

SINGLS 0.997 0.964 0.985 0.986 0.985 0.980 1.000

COMPLS 0.980 0.968 0.979 0.982 0,979 0.955 0.978 1.000

UPGMAS 0.998 0.978 0.993 0.990 0.993 0.975 0.998 0.983 1.000

WPGMAS 0.987 0.973 0.984 0,989 0.984 0.964 0.986 0.988 0.990 1.000

UPGMCS 0.998 0.975 0.992 0.989 0.992 0.977 0.998 0.984 0,999 0,989 1.000

WPGMCS 0.988 0.939 0.967 0.978 0.967 0.985 0.993 0.968 0.987 0.976 0,988 1.000

o coeficiente de correlação cofenética menor em 2, r = 0,67, pode ser visto como

consequência de operação entre grandezas próximas, que não permitem encontrar grupos

bem definidos, um dos objetivos da análise de agrupamento.

Assim, se resultados de métodos de agrupamento devam ser comparados, mostram-

se mais semelhantes COMPL e WPGMA para correlação entre OTU’s, com as variáveis

em escala original, e UPGMA WPGMA para correlações entre OTU’s, com as variáveis

transformadas por estandardização (fig. 1). No mesmo sentido, mas utilizando-se de

distância taxonômica entre OTU’s, os resultados dos mais concordantes são obtidos entre

UPGMA e UPGMC, independentemente da escala das variáveis, o que ocorre também

com os resultados da utilização do WPGMA ( fig. 2).

Agradecimentos: À Universidade Estadual Paulista - UNESP, Rio Claro - SP (proc. 187/71 -IV ) e ao

“Centro di Ecologia Teorica ed Applicata”, Gorizia, Itália, pelas condições de realização de estágio de pós-

doutorado. Ao CNPg, pelo apoio financeiro (procs. 200 586-81.5 e 300 213/90-5)

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ANDERBERG, M.R. 1973. Cluster Analysis for Applications. New York, Acad., 359 p.

DUNN, G. & EVERITT, B. S. 1982. An Introduction to Mathematical Taxonomy. London, Cambridge

Univ. 152 p.

KERR, W. E. 1987. Sex determination in bees XVII. Systems of caste determination in the Apinae, Meliponinae

and Bombinae and their Phylogenetical implications. Revta bras.Genet. Ribeirão Preto, 10:685-694.

KERR, W. E. & CUNHA, R. A.. 1990. Sex determination in bees XXVI. Masculinism of workers in the

Apidae. Revta bras. Genet., Ribeirão Preto, 13:479-489

SNEATH, P. H. A. & SOKAL, R. R. 1973. Numerical Taxonomy. San Francisco ,W.H. Freeman, 573 p.

SOKAL, R. R. & ROHLF, F. J. 1962 .The comparison of dendrograms by objective methods. Taxon,

Washington- DC, 11:33-40.

Recebido em 04.05.1995; aceito em 13.02.1996.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):101-104, 04 out. 1996

DOS NUEVAS ESPECIES SUDAMERICANAS DE SELENOPS

(ARANEAE, SELENOPIDAE)

José Antonio Corronca!

ABSTRACT

TWO NEW SOUTH AMERICAN SPECIES OF SELENOPS (ARANEAE, SELENOPIDAE).

Selenops lavillai sp. n. from Venezuela, Perü y Brazil and S. tomsici sp. n., from Perú, are described

and illustrated.

KEYWORDS. Araneae, Selenopidae, Selenops, new species, South America.

INTRODUCCIÓN

El género Selenops Latreille, 1819 (especie tipo Selenops radiatus Latreille), es de

distribución cosmotropical y cuenta actualmente con 85 especies y 3 subespecies

descriptas, de las cuales sólo 10 son sudamericanas (CORRONCA, en prensa). Revisiones

fueron realizadas por MELLO-LEITÃO (1918) y LINS DUARTE (1978) para Brasil y

BIRABÉN (1953) para la Argentina. Hasta la fecha se desconocía la fauna de selenópidos

de Perú y Venezuela, mientras que la brasilefia estaba poco estudiada. Al realizar la revisión

de la familia Selenopidae para América del Sur (CORRONCA, 1995), se encontró nuevas

especies de Selenops, S. lavillai y S. tomsici, esta última endémica de Perú.

MATERIAL Y MÉTODOS

Para la realización de este trabajo se contó con ejemplares de las siguientes colecciones: CAS,

California Academy of Sciences, San Francisco (C. Griswold y D. Ubick); MCN, Museu de Ciências

Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre (E. H. Buckup); MNRJ, Museu

Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro (A. T. da Costa); USNM, United States

National Museum, Smithsonian Institution, Washington (J. Coddington).

Las medidas se dan en milímetros. Palpos y epiginos fueron disecados y aclarados con ácido

láctico al 95% a bafio de María por 20 minutos. Las abreviaturas utilizadas son: AA, ancho del abdomen;

1. INSUE-Facultad de Ciencias Naturales e Instituto Miguel Lillo. Miguel Lillo 251, (4000) San Miguel de Tucumán, Tucumán, Argentina.

(Becario CONICET-Fundación Miguel Lillo).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):105-110,04 out. 1996

106 CORRONCA

AC, ancho del cefalotórax; AE, ancho del esternón; AL, ancho del labio; d, dorsal; Fe, fémur; LA,

longitud del abdomen; LC, longitud del cefalotórax; LE, longitud del esternón; LL, largo del labio; LT,

longitud total; Mt, metatarso; OLA, ojos laterales anteriores; OLP, ojos laterales posteriores; OMA,

ojos medianos anteriores; OMP, ojos medianos posteriores; Pat+Ti, patela+tibia; p, prolateral; r,

retrolateral; Ta, tarso y v, ventral.

Selenops lavillai sp. n.

(Figs. 1-3)

Tipo. Holotipos, Madre de Dios (12º 50S 69º 17 W), Perú, 12.1X.1984, T. Erwin col.

(USMN).

Etimología. El nombre de la especie es un patronímico en honor al Dr. Esteban O.

Lavilla.

Diagnosis. El macho de Selenops lavillai es afin a S. cocheleti Simon, 1880, 5.

rapax Mello-Leitäo, 1929 y S. melanurus Mello-Leitäo, 1923, por presentar un émbolo

largo y delgado que recorre más de la mitad del bulbo genital. Pero se diferencia por tener

la apófisis tibial retrolateral bífida, con la rama dorsal con extremo puntiagudo (figs. 1, 2),

émbolo largo, gira 3/4 de la curvatura del bulbo genital sobrepasando el extremo del

conductor (fig. 3) y por la forma del conductor (fig. 1).

Holotipo s. Cefalotörax castafio rojizo claro, surcos cervicales oscuros, radiales y

dorsal más oscuros. Detrás de los OMA dos líneas castafias que se adelgazan hasta

unirse antes de la intersecciön de los surcos cervicales. Borde torácico y clípeo castano

rojizo con pelos setiformes negros. Dorso del cefalotórax con pubescencia blancuzca con

pelos negros, cortos, dispersos. Segmento basal del quelícero castafio claro con

abundantes pelos blancos y una mancha lanceolada gris claro en la parte distal. Labio y

enditos pardo oscuros. Esternón amarillento claro con reborde pardo y largos pelos

blancuzcos. Abdomen: dorso, blancuzco con mancha central lanceolada, castafio-grisáceo,

posteriormente ensanchada, con pequenos puntos gris oscuros sin llegar al ápice.

Pubescencia dorsal castafia con largos pelos castafio oscuros, esparcidos; ápice con

largos pelos blanquecinos dispuestos en mechones. Laterales del abdomen, desde la

porción media, con puntitos oscuros hasta cerca del ápice. Hileras pardo claras. Vientre

amarillento claro con largos pelos blanquecinos en los laterales. Patas amarillentas, con

dos bandas transversales gris en las tibias. Porción basal de los metatarsos castafio rojizo

claro aclarándose distalmente. Palpos amarillentos con el extremo del címbio gris. Quelíceros:

retromargen con 2 dientes subiguales separados por una vez y media la base del diente

proximal. Promargen con 3 dientes, medio mayor y distal mayor que el proximal (2-1-3),

dientes medio-distal separados por la mitad de la base del diente medio y dientes medio-

proximal contiguos. Palpo del macho: apófisis tibial retrolateral con rama dorsal más larga

que la ventral, puntiaguda. Extremo de la rama ventral redondeada (figs. 1-2), ambas

apófisis aplanadas. Bulbo genital: pecíolo (P) lanceolado, largo y con una punta muy

aguda hacia el alvéolo. Subtégulo (ST) anular subcuadrangular con 2 anillos bien marcados.

Tégulo (T) bien desarrollado y émbolo (E), de base ancha, termina en una pequena punta

plana a modo de flecha. Conductor (C) de base ancha, en forma de pico con los extremos

poco desarrollados (figs. 1, 3). Apófisis media (AM) con una rama sigmoidea (fig. 2).

Medidas: LT 7,30; LC 3,30; AC 3,70; LA 3,80; AA 2,80; LL 0,63; AL 0,58; LE 1,90; AE

1,65. Ojos: OMA 0,20; OLA 0,13; OMP 0,20; OLP 0,25. Distancias: OMA-OMA 0,15;

OMA-OLA 0,28; OMA-OMP 0,08; OMA-OLP 0,53; OMP-OMP 0,63; OMP-OLP 0,25;

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):105-110,04 out. 1996

Dos nuevas especies sudamericanas de Selenops ... 107

OMP-OLA 0,18; OLP-OLP 1,38; OLA-OLA 1,33. Patas: 2341. Largo /II/III/TV: Fe 4,3/4,6/

4,4/4,6; Pat+Ti 5,6/5,8/5,0/5,0; Mt 4,0/4,0/3,9/3,9; Ta 1,9/2,0/1,7/1,7. Total: 15,80/16,40/15,00/

15,20. Espinaciön: Pata I: Fe p1-1-1,d1-1-1,r0-0-2; Tip1-1-0, d1-1-0, r1-1-0, v2-2-2; Mt p0-

1-0, r0-1-0, v2-2-0; II: Fe p0-0-1, d1-1-1,r0-2-1; Ti p2-0-0, dO-1-0, v2-2-2, r2-0-0, Mt p2-0, v2-

2,12-0; IN: Fe p0-0-2, d 1-1-1, r0-0-2, Ti p0-2-0, r0-2-0, v2-2; Mt p2-0, r2-0, v2-2; IV: Fe p O-

0-2, d1-1-1,r0-0-2, Ti p0-2-0, r0-2-0, v2-2, Mt p2-0, r2-0, v2-2.

Observaciones. Esta especie presenta mechones de pelos blancos en la parte

posterior del abdomen, carácter encontrado también en S. annulatus Simon, 1876, 8.

intrincatus Simon, 1909 y S. zairensis Benoit, 1968, especies que se distribuyen en la

costa centro-oeste de África desde Senegal hasta el Congo.

Distribución. Venezuela, Brasil, Perú.

Material examinado. VENEZUELA. Bolívar: Rio Caura, Campamento Cecilia Magdalena, 1 G,

27.1V.1957, Azambuya col. (CAS). BRASIL. Amazonas: Manaus, Reserva Campina, 1 GS, 30.1.1994,

A. Brescovit col. (MCN 25085); Bahia: 1 & (MNRJ 2240).

Selenops tomsici sp. n.

(Figs. 4-8)

Tipo. Holotipos, 2 Km SE de Cabo Blanco, XI.1941, Col. R. Walls col. y paratipo

2, Mallares, Perú (CAS).

Etimología. El nombre de la especie es un patronímico en honor al Prof. Zlatko

Tomsic, mi maestro y amigo.

Diagnosis. Selenops tomsici comparte con S. maranhensis Mello-Leitão, 1918 la

presencia de una apófisis tibial con la rama ventral poco mayor que la dorsal (figs. 4, 5),

pero se diferencia por la presencia de émbolo corto, con el extremo bífido y por presentar

la apófisis media dividida en dos ramas subiguales (figs. 4, 6). Epigino de la hembra más

largo que ancho, grandes lóbulos laterales con concavidades oblicuas y lóbulo medio

romboidal con el vértice posterior alargado (fig. 7).

Holotipo g. Cefalotórax castafio rojizo claro, región cefälica y surcos más oscuros.

Detrás de los OMA con una mancha triangular clara que termina antes de la unión de los

surcos cervicales. Surco dorsal alargado. Dorso del cefalotórax con pubescencia blancuzca

con pelos negros setiformes esparcidos. Borde torácico y clípeo con largos pelos castafios

y blancos; dos en el lado externo a los OLP. Quelíceros castafio rojizo claro. Labio y

enditos castafio claros, aclarándose anteriormente. Esternón pardo con reborde más

oscuro. Abdomen: pardo-amarillento con pubescencia dorada y pelos castafio claros que

forman manchas difusas. Laterales del abdomen con pequefios puntos negros en el tercio

posterior. Hileras amarillentas. Vientre castafio-pardusco con pubescencia dorada. Patas

castafio claras. Palpo castafio. Quelíceros: retromargen con 2 dientes subiguales separados

por dos veces la base del diente proximal y promargen con 3 dientes medio mayor y

proximal mayor que el distal (2-3-1), medio-proximal contiguos y medio-distal separados

por la mitad de la base del diente medio. Palpo del macho: apófisis tibiales con 2 ramas de

diferentes tamafio y forma (figs. 4, 5). Apófisis dorsal más pequefia y ensanchada, ambas

aplanadas y de bordes redondeados. Bulbo genital: pecíolo (P) subtriangular. Subtégulo

(ST) anular subpiramidal, con 3 anillos (fig. 6). Tégulo (T) bien desarrollado. Embolo (E) de

base ancha, globosa (fig. 6) y de tipo cónico, corto, aplanado en el tercio distal, termina en

una punta bífida (figs. 4, 6). Apófisis media (AM) con dos ramas y forma del conductor (C,

fig. 4).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):105-110,04 out. 1996

108 CORRONCA

Figs. 1-4. Selenops lavillai sp. n.: 1, palpo, ventral; 2, expandido, ventral; 3, expandido, retrolateral. 4,

S. tomsici sp. n.: palpo ventral (AM, apöfisis media; C, conductor; Ci, cimbio; E, émbolo; P, pecíolo; ST,

subtégulo; T, tégulo). Barra: 0,2 mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):105-110,04 out. 1996

Dos nuevas especies sudamericanas de Selenops ... 109

Figs. 5-8. Selenops tomsici sp. n.: 5, apófisis tibial, retrolateral superior; 6, expandido, ventral; 7,

epigino, ventral; 8, vulva mostrando espermatecas y ducto de fertilización. (AG, aperturas genitales; Co,

concavidades; DF, ducto de fertilización; LL, lóbulo lateral del epigino; LM, lóbulo medio del epigino; S,

espermateca). Barra: 0,2 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):105-110,04 out. 1996

110 CORRONCA

Medidas: LT 6,60; LC 3,45; AC 3,50; LA 3,15; AA 2,80; LL 0,50; AL 0,70; LE 1,85;

AE 1,90; Ojos: OMA 0,18; OLA 0,13; OMP 0,25; OLP 0,30; Distancias: OMA-OMA 0,25;

OMA-OLA 0,35; OMA-OMP 0,10; OMA-OLP 0,58; OMP-OMP 0,70; OMP-OLP 0,30;

OMP-OLA 0,18; OLP-OLP 1,63; OLA-OLA 1,30. Patas: 2341. Largo I/II/III/[V: Fe 4,2/4,8/

4,8/4,7; Pat+Ti 5,5/6,2/5,5/5,2; Mt 3,7/4,1/3,9/3,8; Ta 1,6/1,6/1,4/1,5. Total: 15/16,7/15,6/

15,2. Espinación: pata I: Fepl-1-1,d1-1-1,r0-1-2, Tipl-O-1,d1-0-1,r1-0-1, v 2-2-2, Mt p0-1-

0, v2-2, II: Fep1-0-2, d1-1-1, r0-1-2, Tip1-0-1, dO-1-0, r1-0-1, v2-2-2, Mt p0-1-0, v2-2, HI: Fe

p1-0-2, d1-1-1,r0-1-2, T1p1-0-1,r1-0-1, v2-2-0, Mt p0-1-0, v2-2, IV: Fe p1-0-2, d1-1-1,r0-0-2,

Ti p0-0-1, r1-0-1, v2-2-0, Mt p0-1-0, v2-2.

Paratipo 2. Coloraciön semejante al macho excepto que las patas muestran las

siguientes manchas: Fe I, IV; 2 bandas transversales, p; Fe ILIII, 3; Pat I-IV, 1 mancha v; Ti

LIV, 2 manchas p y 2 1; Mt I-III oscuros; Mt IV con 2 zonas oscuras: una en la base y otra

distal. Palpo pardo oscureciéndose hacia el tarso, desde la tibia variegado. Genitalia.

epigino más largo que ancho. Lóbulo medio (LM) romboidal, anterior, con el vértice

posterior muy alargado (fig. 6) y parte anterior con una proyección mediana en forma de

tallo. Lóbulos laterales (LL) bien desarrollados, aperturas genitales (AG) a los lados del

lóbulo medio, ampliamente separadas. Aberturas secundarias (AS) en los lóbulos laterales,

próximas (fig. 7). Vulva: espermatecas (S) separadas con lóbulos laterales (fig. 8).

Medidas: LT 9,30; LC 3,90; AC 4,20; LA 5,40; AA 3,70; LL 0,60; AL 0,75; LE 2,20;

AE 2,00. Ojos: OMA 0,23; OLA 0,13; OMP 0,28; OLP 0,38. Distancias: OMA-OMA 0,30;

OMA-OLA 0,58; OMA-OMP: 0,15; OMA-OLP 0,90; OMP-OMP 0,93; OMP-OLP 0,40;

OMP-OLA 0,17; OLP-OLP 2,03; OLA-OLA 1,78. Patas: longitud y espinación no registradas

pues todas las hembras examinadas contaban con las patas sueltas en el frasco.

Distribución. Perá.

Material examinado. PERU. Lima: Quebrada Verde, 1 S, 5.V1.1939, M. Hibbard col. (CAS);

Quebrada Verde, 2 9, 1 inmad., P. Aguilar col. (CAS); Quebrada Chamaral, 1 9, 11.V.1941, H.E.F. col.

(CAS); Quebrada Mogollón, 3 inmad., 6.V1.1939, D.L.F. & H.E.F. col. (CAS). Mallares, 4 9, 13.VI1.1941,

H.E.F. & D.L.F. col. (CAS); Valle de Parifias, 2 9, 21.V.1929, D.LF. & H.E.F. col. (CAS); Cascas cerca

de Trujillo, 2 2. 11.1942, W. Weyrauch col. (CAS); Quiroz, 3 inmad., 26.X11.1940, H.E.F. & D.L.F. col.

(CAS).

Agradecimientos. Al CONICET sin cuyo apoyo sería imposible la realización de este

trabajo, a la Fundación Miguel Lillo por permitirme el uso de su equipamiento, a los curadores de los

museos por el préstamo del material y a los dos árbitros anónimos por sus sugerencias.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

BIRABÉN, M. 1953. Selenópidos Argentinos (Araneae). Publnes Misión Estud. Patol. reg. argent.

Jujuy, Jujuy, 24(83-84): 103-113.

CORRONCA, J. A. 1995. Contribución al conocimiento del género Selenops Latreille, 1819

(Araneae, Selenopidae), para América del Sur. 199 f. Tesis Doctoral, Universidad Nacional

de Tucumán, Tucumán (No publicada).

CORRONCA, J. A. (en prensa). Catálogo de las especies de la familia Selenopidae Simon, 1887

(Araneae). Acta Zool. Lilloana, Tucumán, 44(2).

LINS DUARTE, P. F. 1978. O gênero Selenops Dufour in Latreille, 1819, no Brasil (Araneae-

Selenopidae). 71 f. Dissertação Mestrado, Zool., Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de

Janeiro. (No publicada).

MELLO-LEITÃO, C. F. de. 1918. Drassoideas do Brasil. Archos. Esc. sup. Agric. Med. veter.,

Niterói, 2: 17-74.

Recebido em 16.11.1994; aceito em 24.11.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):105-110,04 out. 1996

ISÓPODOS TERRESTRES (CRUSTACEA, ONISCIDEA)

DE SANTA CATARINA E RIO GRANDE DO SUL, BRASIL!

Paula Beatriz de Araujo“

Ludwig Buckup*

Georgina Bond-Buckup?

ABSTRACT

TERRESTRIAL ISOPODS (CRUSTACEA; ONISCIDEA) FROM SANTA CATARINA AND RIO

GRANDE DO SUL, BRAZIL. In samples of terrestrial isopods collected in the States of Santa Catarina and Rio

Grande do Sul, Brazil, 14 species were identified. Seven were not previously recorded: Burmoniscus meeusei

(Holthuis, 1947), Neotroponiscus daguerrii (Giambiagi de Calabrese, 1939), Porcellio scaber Latreille, 1804, P.

dilatatus Brandt, 1833, Porcellionides sexfasciatus (Koch, 1847), Cubaris murina Brandt, 1833 and

Armadillidium nasatum Budde-Lund, 1885. The species Benthana picta (Brandt, 1833), Atlantoscia floridana

(Van Name, 1940), Balloniscus sellowii (Brandt, 1833), Porcellio laevis Latreille, 1804, Porcellionides pruinosus

(Brandt, 1833) and Armadillidium vulgare (Latreille, 1804) show amore widespread distribution that formerly

recorded. A diagnostic description with illustrations is given to the species as well as maps with records in the

study area.

KEYWORDS. Isopoda, Oniscidea, Southern Brazil.

INTRODUÇÃO

Mais de 200 espécies de isópodos terrestres são conhecidas para a Região

Neotropical. No Brasil, os trabalhos sobre a sistemática do grupo apóiam-se,

principalmente, em exemplares coletados nas Regiões Sudeste, Nordeste e Norte.

As primeiras informações sobre os isópodos terrestres do sul do Brasil são de

VERHOEFF (1941), contendo a descrição de Benthana longicornis e Brasilocellio

nodulosus, (atualmente Neotroponiscus nodulosus) ambas de Nova Teutônia (SC).

1. Parte da dissertação de Mestrado da primeira autora, Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Paraná. Auxílio FAPERGS

proc. nº 395/90.

2.Departamento de Zoologia, Instituto de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Av. Paulo Gama, 40. CEP 90040-

060, Porto Alegre, RS, Brasil.

3.Escola Técnica de Comércio, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Av. Ramiro Barcelos, 2777. CEP 90035-007, Porto Alegre,

RS, Brasil.

4.Pesquisadora do CNPq.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

112 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

CAMARGO (1954, 1955) registrou para Porto Alegre, RS, a ocorrência de Armadillidium

vulgare (Latreille, 1804), Metoponorthus pruinosus, atualmente Porcellionides pruinosus

(Brandt, 1833), Philoscia picta, atualmente Benthana picta (Brandt, 1833). GRUNER

(1955) e LEMOS DE CASTRO (1958) trataram de Benthana picta (citada para Blumenau,

SC) e da redescrição de B. longicornis. ANDERSSON (1960) examinou material de Nova

Teutônia, redescrevendo Benthana longicornis e Brasilocellio nodulosus, descrevendo

Pectenoniscus angulatus, Trichorhina brasiliensis e Brasilocellio plaumanni e citando

Porcellionides pruinosus. LEMOS DE CASTRO (1976) apresentou a distribuição geográfica

de Balloniscus sellowii, citando a espécie para Porto Alegre e Bento Gonçalves, RS e, em

1985, redescreveu Atlantoscia alceui Ferrara & Taiti, 1981, atualmente A.floridana (Van

Name, 1940), citando-a para Guaíba, RS. ARAUJO & BUCKUP (1994a, 1994b) descreveram

Trichorhina acuta, Benthana taeniata e Phalloniscus meridionalis com registros em

várias localidades de Santa Catarina e Rio Grande do Sul.

Tendo como objetivo a ampliação do conhecimento sobre a composição da

fauna de isópodos terrestres do sul do Brasil, foram realizados trabalhos de coleta em

diversos pontos dos territórios dos Estados de Santa Catarina e Rio Grande do Sul.

MATERIAL E MÉTODOS

As coletas foram realizadas nos Estados de Santa Catarina e Rio Grande do Sul, Brasil,

utilizando-se o método de captura manual no local ou captura de exemplares a partir de coleta de

folhedo. Ocasionalmente, utilizou-se o Funil de Berlese. Os isópodos foram comumente encontrados

em pátios de residências, em terrenos baldios, sob pedras, madeira, tijolos, folhas caídas e lixo. Nos

ambientes não urbanos, foram encontrados sob folhas, pedras e troncos caídos, em árvores e em

bromeliáceas.

Examinaram-se as coleções do Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio

Grande do Sul, Porto Alegre (MCNF) e do Museo Argentino de Ciencias Naturales Bernardino Rivadavia,

Buenos Aires, Argentina (MACN). O material coletado encontra-se depositado no Setor de Crustáceos

Superiores, Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS). A maior

parte do material examinado foi coletado por P. B. Araujo.

Para obtenção dos tamanhos máximos, considerou-se a medida da margem anterior da cabeça

até o ápice do telso (comprimento) e a medida na altura do quarto ou quinto pereionito (largura). As

medidas referem-se aos maiores exemplares e estão expressas em milímetros. As medidas dos nódulos

laterais foram obtidas segundo VANDEL (1962) sendo que nas espécies onde o tegumento se apresenta

endurecido, os nódulos foram representados diretamente nas ilustrações de corpo inteiro (fig.39).

Abreviaturas no texto: ov, ovígera; j, jovem.

PHILOSCIIDAE

Chave para os gêneros no sul do Brasil.

1. Exito da maxílula com dentes ctenados (figs. 3,7); exópodo do pleöpodo 1 do macho

com expansão dentiforme dirigida para fora (figs.4,10)........................... Benthana

Exito da maxílula com dentes fendidos (figs. 13,17); exópodo do pleópodo 1 do

macho sem expansão dentiforme dies. 14 20) ......renoreraramanos sono a hoe Roo 2

2(1). Endito do maxilípodo sem penicílio (fig.12); epimeros dos pleonitos visíveis em vista

dorsal (fig. 11)3:....2.2.. enden. a ie Aber. Bar. 20. Ar Atlantoscia

Endito do maxilipodo com penicílio (fig. 19a); epímeros dos pleonitos não visíveis em

vistadorsal(ig: 15)... eb dom Mi, ql Mess nal ED Burmoniscus

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 113

Chave para as espécies de Benthana Budde-Lund, 1908 no sul do Brasil.

1. Antenas com a porção distal do quinto artículo do pedúnculo e a extremidade proximal

do primeiro artículo flagelar brancos ou amarelados; endópodos dos urópodos

auase.do comprimento dosexópodos (fig. D)...................44ee.un0u0 dee B.picta

Antenas marrom uniforme; endópodos dos urópodos atingem a metade do

ERMPBEIMENIO dos exópodos (HEI)F urn. «Te cam eres ob cano coa Adap B. longicornis

Benthana picta (Brandt, 1833)

(Figs. 1-4, 64)

Philoscia picta BRANDT, 1833:183.

Philoscia (Benthana)picta; BUDDE-LUND, 1908:289, fig.43, pl.16.

Benthana picta; VERHOEFF, 1941:121.

Medidas. Macho: comprimento 11,5 e largura 4,1; fêmea: comprimento 12,0 e largura

5,1.

Macho em vista dorsal (fig.1). Tegumento liso, brilhante. Posição dos nódulos

laterais (fig.2). Pigmento castanho escuro com manchas amareladas. Antenas com a porção

distal do quinto artículo do pedúnculo e a extremidade proximal do primeiro artículo

flagelar brancos ou amarelados. Olhos com 22-24 omatídios. Telso com extremidade

obtusa. Antenas, quando distendidas para trás, alcançam o sexto pereionito; flagelo

ligeiramente mais longo que o quinto artículo do pedúnculo com artículos intermediário e

apical de tamanho semelhante. Exito da maxílula com 4+6 (5 ctenados) dentes (fig.3).

Maxila com os 2 lobos igualmente desenvolvidos. Maxilípodos com 2 dentes na borda

superior do endito, próximos da borda lateral externa. Endópodos dos urópodos longos,

quase do comprimento dos exópodos.

Machos: pereiópodo 1 com mero e carpo densamente cerdosos. Exópodo do

pleópodo I cordiforme com curvatura suave entre a extremidade distal e o ápice da expansão

dentiforme (fig.4); endópodo com pequenas cerdas na extremidade distal. Pleópodo 2

com exópodo subtriangular; endópodo com a extremidade distal extremamente afilada.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Faxinal dos Guedes, 2 9 ov, 19.1.1991

(UFRGS 1704); Ponte Serrada, 2 6,2 2, 19.1.1991 (UFRGS 1702); Catanduvas, 19 6,24 9,3 9 ov,

19.1.1991 (UFRGS 1700, 1706); Joaçaba, 2 S, 1 9, 19.1.1991 (UFRGS 1701); Campos Novos, 10 S, 1

9,5 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1705); São Joaquim, 1 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1703); Rio Grande do

Sul: Erechim, 6 34,4 2, 1 2 ov, 23.1.1991 (UFRGS 1698); Fontoura Xavier, 13 09,25 9,3 9 ov,

01.11.1991 (UFRGS 1699).

Distribuição. Espírito Santo, Brasil, a Buenos Aires, Argentina (LEMOS DE

CASTRO (1958). Novos registros para Santa Catarina e Rio Grande do Sul (fig.64).

Discussão. E a espécie do gênero que apresenta a maior área de distribuição no

sul do Brasil. Concorda-se com LEMOS DE CASTRO (1958) de que a citação de B. picta

para a Argentina por GIAMBIAGI DE CALABRESE (1931) pode não estar correta. A

descrição é incompleta e não refere a forma do exópodo do pleópodo 1 do macho e exito

da maxílula com dentes ctenados. Ainda, as ilustrações fornecidas sugerem que os

espécimes não correspondem a B. picta, pois mostram os endópodos dos urópodos

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

114 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

ISSN AR N |

le É War.)

x WR Sr

| u mm IV v vi vu

Figs. 1-6. Benthana picta:l, S dorsal; 2, coordenadas b/c d/c dos nódulos laterais; 3, exito da maxílula;

4, exöpodo do pleópodo 1. B. longicornis:5, S dorsal; 6, coordenadas b/c e d/c dos nódulos laterais. Escalas:

figs. 1, 5: Imm; fig. 3: 0,1 mm; fig. 4: 0,2 mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 115

muito curtos. Assume-se que as citações de CAMARGO (1954, 1955) de Philoscia picta

correspondam, na verdade, a Balloniscus sellowii.

Benthana longicornis Verhoeff, 1941

(Figs. 5-10, 64)

Benthana longicornis VERHOEFF, 1941:121, figs.1-6.

Medidas. Macho: comprimento 7,3 e largura 2,6; fêmea: comprimento 10,4 e largura

39.

Macho em vista dorsal (fig.5). Tegumento liso, brilhante. Posicäo dos nödulos

laterais (fig.6). Pigmento castanho-escuro com manchas amareladas. Antenas marrom

uniforme. Olhos com 23-24 omatidios. Telso triangular com äpice obtuso. Antenas, quando

distendidas para trás, alcançam o sexto pereionito; flagelo ligeiramente mais longo que o

quinto artículo do pedúnculo com o artículo intermediário menor. Exito da maxílula com

4+6 (5 ctenados) dentes (fig. 7). Lobo externo da maxila com margem interna reta (fig. 8).

Maxilipodos com 2 dentes na borda superior do endito precedidos de pequena saliência

próxima à borda lateral externa. Endópodos dos urópodos atingem a metade do

comprimento dos exópodos.

Machos: pereiópodo 1 com mero e carpo densamente cerdosos (fig.9). Exópodo

do pleópodo 1 cordiforme com curvatura acentuada entre a extremidade distal e o ápice da

expansão dentiforme (fig. 10); endópodo sem particularidades. Exópodo do pleópodo 2

subtriangular; endópodo com ápice afilado.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Nova Teutônia, 4 8,4 9, 22.1.1991

(UFRGS 1505); 3 S, 6 9, 18.V.1992 (UFRGS 1506).

Distribuição. Somente registro na localidade tipo: Nova Teutônia, Santa Catarina,

Brasil (fig.64).

Discussão. ANDERSSON (1960) ao caracterizar a espécie chamou a atenção

para as ilustrações dos dentes do exito da maxílula apresentadas por VERHOEFF (1941) e

GRUNER (1955) e observou que o segundo dente cônico é distintamente o menor, resultado

diferente do apresentado pelos outros autores, para quem os três dentes são do mesmo

tamanho. Também VERHOEFF (1941) não se referiu às cerdas na borda externa do exópodo

do pleópodo 1 do macho, característica presente no material examinado por ANDERSSON

(1960). No material examinado observou-se total concordância com as afirmações de

ANDERSSON (1960).

Atlantoscia floridana (Van Name, 1940)

(Figs. 11-14, 64)

Philoscia floridana VAN NAME, 1940:113, fig.4.

Sinonímia: consultar TAITI & FERRARA (1991b).

Medidas. Macho: comprimento 5,2, largura 2,3; fêmea: comprimento 7,0, largura

28.

Macho em vista dorsal (fig.11). Tegumento liso, brilhante. Coordenadas d/c dos

nódulos laterais com pico no pereionito IV (FERRARA & TATTI, 1981). Pigmento castanho-

escuro variegado com manchas amareladas; duas linhas paralelas claras que se estendem

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

116 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

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14]

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Figs. 7-14. Benthana longicornis: 7, exito da maxílula; 8, maxila; 9, pereiópodo 1; 10, exópodo do

pleöpodo 1. Atlantoscia floridana: 11, S dorsal; 12, maxilipodo; 13, exito da maxílula; 14, exöpodo do

pleöpodo 1. Escalas: figs. 7, 8, 10, 12, 13: 0,1 mm; figs. 9, 14: 0,2 mm; fig. 11: 1 mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 117

ao longo dos epimeros do pereion; presença ou não de destacada faixa despigmentada

em forma de “U” invertido na cabeça. Olhos com 15 a 17 omatídios. Telso triangular com

ápice arredondado. Antenas, quando distendidas para trás, podem ultrapassar o terceiro

pereionito; artículos do flagelo com comprimentos semelhantes. Exito da maxílula com 4+6

(5 fendidos) dentes (fig.13). Maxilípodo desprovido de penicílio (fig.12). Pereiöpodos

providos de seta dactilar.

Machos: pereiópodo 7 com ísquio pouco dilatado na metade distal do lado

interno. Exópodo do pleópodo 1 estreitando-se na extremidade (fig. 14); endópodo provido

de pequenas cerdas e um lóbulo na margem externa da extremidade distal. Exópodo do

pleópodo com a extremidade distal alongada; endópodo com a extremidade distal alargada.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Timbó, 1 9, 17.V.1991 (UFRGS 1754);

Blumenau, 2 9,3 2,6 9 ov, 17.V.1991, (UFRGS 1742, 1739); Nova Teutônia, 1 9? ov, 22.1.1991 (UFRGS

1758); 1 Q, 1 2 ov, 18.V.1992 (UFRGS 1759); Joaçaba, 1 9, 1 9 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1753); Pouso

Redondo, 1 59,6 9,8 9 ov, 18.V.1991 (UFRGS 1749, 1750); Major Gercino, 3 6,2 9,2 9 ov, 16.V.1991

(UFRGS 1737, 1748); São Bonifácio, 5 0,3 9,5 2 ov, 16.V.1991 (UFRGS 1756, 1757); São Martinho,

11 8,7 2,2 9 ov, 16.V.1991 (UFRGS 1743); Gravatal, 31 6,20 9, 17 9 ov, 15.V.1991 (UFRGS 1744,

1746); Urussanga, 7 9,4 9, 14 2 ov, 19.V.1991 (UFRGS 1738, 1740); Tubarão, 19 5, 23 2,22 2 ov,

15.V.1991 (UFRGS 1751, 1752); Sombrio, 9 &, 9 2, 7 9 ov, 15.V.1991 (UFRGS 1736, 1741); Praia

Grande, 10 9,8 2,8 © ov, 19.V.1991 (UFRGS 1745, 1747); Rio Grande do Sul: Iraí, 1 6,5 9,

21.1.1991 (UFRGS 1717); Santa Rosa, 1 6,6 2,1 2 ov, 03.11.1991 (UFRGS 1724); Passo Fundo, 2 9 ov,

23.1.1991 (UFRGS 1713); Torres, 4 6, 6 ?, 20.V1.1991, (UFRGS 1730); Estrela, 2 0,6 9,3 9 ov,

01.11.1991 (UFRGS 1731); Parobé, Santa Cristina do Pinhal, 1 2, 1 9 ov, 27.X1.1991 (UFRGS 1715);

Santa Cruz do Sul, 6 0,5 2,4 9 ov, 06.11.1991 (UFRGS 1732); Taquara, 4 9,5 2,4 9 ov, 17.1.1991

(UFRGS 1707, 1708); Sapucaia do Sul, 19 GS, 28 2, 17 9 ov, 13.V.1991 (UFRGS 1711, 1722); 3 6,

05.1X.1991 (UFRGS 1726); Osório, 4 6, 10 9,1 9 ov, 09.11.1991 (UFRGS 1723); 4 6,1 9 ov,

19.V.1991, (UFRGS 1760); Triunfo, 1 9, 12.VI.1991 (UFRGS 1716); Tramandaí, 1 S, 09.11.1991

(UFRGS 1719); Eldorado do Sul, 16 6, 25 9, 18 9 ov, 08.11.1990, (UFRGS 1300); 1 9 ov, 02.1V.1991

(UFRGS 1734); 4 9,4 9,4 9 ov, 16.1V.1990 (UFRGS 1720); Porto Alegre, 4 6, 6 9, 16.11.1989 (UFRGS

862); 3 O, 15 9, 13.IX.1989 (UFRGS 962); 7 S,9 2, 29.11.1989 (UFRGS 1259); Viamão, 7 9,3 9, 11

92 ov, 09.11.1991 (UFRGS 1729); 7 0,2 9,3 9 ov, 2 j, 21.1V.1991 (UFRGS 1714); Viamão, Itapuã, 3 O,

79,4 9 ov, 20.1X.1991 (UFRGS 1712); Capivari, 1 2, 09.11.1991 (UFRGS 1721); Cidreira, 10 &, 6 9,

1 ov, 09.11.1991 (UFRGS 1725); Barra do Ribeiro, 1 S, 27.XI[.1991 (UFRGS 1735); Tapes, 31 &, 29

2, 24 9 ov, 23.11.1991 (UFRGS 1718, 1733); Camaquã, 10 9,2 9,4 9 ov, 23.11.1991 (UFRGS 1728);

Santana do Livramento, 1 9, 09.1.1991 (UFRGS 1727); Rio Grande, 11 9,7 9, 5 j, 05.IV. 1991 (UFRGS

1709).

Distribuição. Do norte do Brasil até La Plata (Argentina), incluindo as ilhas

Trindade e Abrolhos (LEMOS DE CASTRO, 1985); ilhas Ascensão e Santa Helena

(FERRARA & TATTI, 1981). Registra-se pela primeira vez a espécie para Santa Catarina e

amplia-se o conhecimento da área de ocorrência no Rio Grande do Sul (fig. 64).

Discussão. FERRARA & TATTI (1981) e TAITI & FERRARA (1991b) referem

uma maxílula com o grupo interno do exito composto por 6 dentes, em espécimes

provenientes da ilha Ascensão e da Flórida (E.U.A.). Concorda-se com LEMOS DE

CASTRO (1985) de que, pelo menos para os exemplares do Brasil, o número de dentes do

grupo interno do exito da maxílula corresponde a 5, não sendo encontrado um dente

menor não fendido.

E comum no território brasileiro sendo o representante de Philosciidae

predominante nos diferentes habitats: bromélias, fungos da família Polyporaceae, ninhos

de formigas, humus em matas ou capoeiras, paus podres, sob folhas de bananeira ou de

coqueiro caídas no chão, sob pedras, cascas de côco e detritos em geral (LEMOS DE

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

118 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

CASTRO, 1985). O material coletado provém de variados substratos que incluem muitos

dos citados acima, além de ambientes domésticos e bosques de eucalipto.

Burmoniscus meeusei (Holthuis, 1947)

(Figs. 15-21, 64)

Chaetophiloscia meeusei HOLTHUIS, 1947:124, figs.1-2.

Burmoniscus meeusei; TAITI & FERRARA, 1991a:212, figs.7-8.

Medidas. Macho: comprimento 6,7 e largura 2,8; fêmea: comprimento 7,3 e largura

3m.

Macho em vista dorsal (fig.15). Tegumento liso, brilhante. Posigäo dos nödulos

laterais com picos nos pereionitos Ile IV em d/c (fig. 16). Pigmento castanho com arabescos

amarelados particularmente numerosos na cabeça e no tórax; antenas castanhas com o

último segmento do pedúnculo esbranquiçado na porção distal. Olhos com 20 omatídios.

Epímeros dos pleonitos II ao V dirigidos ventralmente, não visíveis em vista dorsal. Telso

triangular com ápice arredondado que não alcança o final do segmento basal dos urópodos.

Antenas, quando distendidas para trás, alcançam o quarto pereionito; flagelo ligeiramente

menor que o quinto artículo do pedúnculo. Exito da maxílula com 4+6 (5 fendidos) dentes;

endito com 2 penicílios diferentes (fig. 17). Maxila com o lobo interno muito menor que o

lobo externo (fig.18). Endito do maxilípodo caracterizado pela presença de 2 dentes na

borda sinuosa superior (fig.19) e um penicílio em vista dorsal (fig.19a). Exópodos e

endópodos dos urópodos inseridos em nível próximo; endópodos curtos atingindo no

máximo a metade do comprimento do exópodo.

Machos: exópodo do pleópodo 1 terminando em ápice estreito e dirigido para

fora (fig. 20); endópodo provido de pequenas cerdas e um lóbulo na margem externa da

extremidade distal. Exópodo do pleópodo 2 com a extremidade inferior alongada; endópodo

estreitando pouco desde a base até o ápice. Exópodo do pleópodo 5 com cerdas na face

dorsal (fig. 21).

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Timbó, 19, 19, 17.V.1991 (UFRGS 1501); Blumenau, 1

S, 17.V.1991 (UFRGS 1502); Joaçaba, 25, 39 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1503); Major Gercino, 15, 49, 16.V.1991

(UFRGS 1504).

Distribuição. Primeiro registro da espécie para as Américas; Brasil: Santa Catarina

(fig.64).

Discussão. O gênero Burmoniscus reúne 23 espécies e é amplamente distribuído

na Austrália e regiões Oriental e Afrotropical (TAITI & FERRARA, 1986); a maioria nativa

da área Indo-pacífica, particularmente das Ilhas Sunda (Indonésia). B. meeusei foi

introduzida no Brasil (Dr. Franco Ferrara, comunicação pessoal). Também foi introduzida

na Inglaterra (encontrada em estufas no Royal Botanic Garden, Kew) e no Hawai, junto

com outras espécies (TAITI & FERRARA, 1991a).

As características mais marcantes que diferenciam B. meeusei dos demais

Philosciidae encontrados são (1) coordenadas d/c dos nódulos laterais com pico nos

pereionitos IL e IV; (2) presença de um penicílio no endito do maxilípodo e (3) epímeros dos

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 119

Figs. 15-21. Burmoniscus meeusei: 15, © dorsal; 16, coordenadas b/c e d/c dos nódulos laterais; 17,

maxílula; 18, maxila; 19, maxilípodo; 19a, detalhe da vista dorsal do endito; 20, exópodo do pleópodo

1; 21, exöpodo do pleópodo 5. Escalas: fig. 15: 1 mm; figs. 17-19: 0,Imm; figs. 20,21: 0,2mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

120 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

pleonitos II a V dirigidos ventralmente, não visíveis em vista dorsal.

BALLONISCIDAE

Balloniscus sellowii (Brandt, 1833)

(Figs. 22-27, 65)

Philoscia sellowii BRANDT, 1833:183.

Sinonímia: consultar LEMOS DE CASTRO (1976) .

Medidas. Macho: comprimento 10,6 e largura 4,8; fêmea: comprimento 11,9 e

largura 5,3.

Macho em vista dorsal (fig. 22). Tegumento liso, brilhante. Posição dos nódulos

laterais (fig.23); nódulo lateral do pereionito VII localizado na borda inferior do epimero,

próximo à linha marginal lateral (fig.24). Poros glandulares numerosos nas bordas dos

epímeros (mais de 30). Pigmento castanho-escuro ou claro, às vezes avermelhado e com

pequenas manchas, destacando-se uma faixa mediana longitudinal escurecida, tendo em

cada lado uma faixa clara seguida de uma faixa escura. Olhos com 23-24 omatídios. Telso

triangular com ápice arredondado que não ultrapassa em comprimento o protopodito dos

urópodos. Antenas, quando distendidas para trás, podem ultrapassar pouco a linha

marginal distal do terceiro pereionito. Exito da maxílula com 4+6 (4 fendidos) dentes.

Endito do maxilípodo com dois dentículos na borda superior muito próximos ao palpo e

com diminutos pêlos na borda interna. Urópodos com exópodos longos (mais de 2 vezes

o comprimento do telso); inserção dos endópodos não visível em vista dorsal.

Machos: pereiöpodo 1 com numerosas cerdas no mero e carpo ( fig.26). Pereiöpodo

7 com uma concentração de pequenas cerdas e espinhos no ísquio (fig.27). Exópodo do

pleópodo 1 com a linha marginal distal curva terminando em uma ponta arredondada

formada junto com a linha marginal externa (fig. 25); endópodo alongado e provido de

uma série de pequenas cerdas na margem distal externa. Exópodo do pleópodo 2

subtriangular; endópodo com a extremidade distal afilada.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Papanduva, 35 O, 29 ©, 17.V.1991 (UFRGS

1787); Campo Erê, 3 0,6 2,2 9 ov, 20.1.1991 (UFRGS 1780); São Lourenço d'Oeste, 19 9, 18 ,209

ov, 20.1.1991 (UFRGS 1779); Anchieta, 2 4,7 92,1 2 ov, 20.1.1991 (UFRGS 1781); São Miguel d'Oeste,

3 6,49, 20.1.1991 (UFRGS 1782); Xanxerê, 21 59,22 2 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1778); Faxinal dos

Guedes, 1 9,1 9, 19.1.1991 (UFRGS 1777); Ponte Serrada, 12 6, 11 211 9 ov, IND ANNTERES

1776); Irani, 1.6, 1 9 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1775); Santa Cecília; 2 GS, 49, 1 j, 17.V. 1991 (UFRGS

1795); Chapecó, 2 S,8 2,3 9 ov, 21.1.1991 (UFRGS 1783); Catanduvas, 25 &, 24 9, 45 2 ov, 19.1.1991

(UFRGS 1774); Itá, 28 SQ, 11 9, 6 2 ov, 22.1.1991 (UFRGS 1784); Campos Novos, 2 0,3 2, 10 £ ov,

18.1.1991 (UFRGS. 1773); Florianópolis, 1 €, 03.1.1991 (UFRGS. 1786); Lages, 5 8, 8 21070 ow

18.1.1991 (UFRGS 1772); Bom Retiro, 14 6,9 2, 18.V.1991 (UFRGS 1788); Urubici, 23 8,16 9,2 9

ov, 18.V.1991 (UFRGS 1789); São Joaquim 5 S,4 2,6 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1794); Bom Jardim da

Serra, 7 d,9 9, 19.V.1991 (UFRGS 1790); Laguna, 1 &, ?.11.1992 (UFRGS 1793); Sombrio, 1 9,

15.V.1991 (UFRGS 1786); Praia Grande, 4 9, 19.V.1991 (UFRGS 1791, 1792); Rio Grande do Sul:

Três Passos, 2 9,5 9,5 9 ov, 03.1.1991 (UFRGS 1467); Erechim, 3 9,5 9,4 9 ov, 23.1.1991 (UFRGS

1444); Coronel Bicaco, 1 9, 02.11.1991 (UFRGS 1466); Palmeira das Missões, 9 9,2 9,2 9 ov,

02.11.1991 (UFRGS 1451); Sarandi, 2 9,2 9, 12 2 ov, 02.11.1991 (UFRGS 1456); Passo Fundo, 2 d,

23.1.1991 (UFRGS 1474); Santo Angelo, 1 9,1 9 ov, 04.11.1991 (UFRGS 1472); São Luiz Gonzaga, 1

S,1 9 ov, 04.11.1991 (UFRGS 1477); Casca, 2 4, 119,3 9 ov, 23.1.1991 (UFRGS 1479); Bom Jesus, 3

9,2 2,72 ov, 17.1.1991 (UFRGS 1491); Veranópolis, 4,2 9,1 2 ov, 23.1.1991 (UFRGS 1483);

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

121

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ...

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Figs. 22-28. Balloniscus sellowii: 22, S dorsal; 23, coordenadas b/c e d/c dos nódulos laterais; 24, epímero

do pereionito 7 (n.1, nódulos laterais, p.g, poros glandulares); 25; exópodo do pleópodo 1; 26, pereiópodo

1; 27, pereiópodo. Neoiroponiscus daguerrii: 28, G dorsal. Escalas: figs. 22,28: Imm; figs. 24-27: 0,2mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

122 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

Fontoura Xavier, 2 &,2 9 ov, 01.11.1991 (UFRGS 1485); 4 9,5 9, 01.11.1991 (UFRGS 1490); Flores da

Cunha, Otávio Rocha, 1 S,1 9, 13.11.1991 (UFRGS 1468); Itaqui, 3 JS, 20.X.1991 (UFRGS 1447);

Santiago, 3 6,9 9, 05.11.1991 (UFRGS 1462); Garibaldi, 2 9,2 9,9 9 ov, 23.1.1991 (UFRGS 1453);

Estrela, 7 &, 12 9,5 9 ov, 01.11.1991 (UFRGS 1486); Agudo, 3 9,2 9,1 9 ov, 05.11.1991 (UFRGS 1482);

São Vicente do Sul, 1 92,1 9 ov, 05.1.1991 (UFRGS 1484); Santa Maria, 10 9,6 9,2 9 ov, 05.11.1991

(UFRGS 1478); Santa Cruz do Sul, 4 5,6 9,1 2 ov, 06.11.1991 (UFRGS 1465); Taquara, 1 9,1 9,29

ov, 17.1.1991 (UFRGS 1492); Capão da Canoa, 2 S,1 9, 13.X.1991 (UFRGS 1452); Triunfo, 3 9,3 9,

12.V1.1991 (UFRGS 1476); Alegrete, 3 9, 16.V.1991 (UFRGS 1445); Rio Pardo, 2 0,9 9,2 ov,

06.11.1991 (UFRGS 1455); Tramandaí, 9 S, 13 2,2 9 ov, 09.11.1991 (UFRGS 1470); Eldorado do Sul,

2 6, 08.11.1990 (UFRGS 1301); 2 6, 1 2, 02.1V.1990 (UFRGS 1497); 2 6,5 9, 16.1V.1990 (UFRGS

1494); 1 9 ov, 30.IV.1990 (UFRGS 1496); 3 S, 10 9, 05.V.1990 (UFRGS 1495); Porto Alegre, 2 9, 4

2, 16.11.1989 (UFRGS 877); 5 9, 16.11.1989 (UFRGS 1266); 19 9, 05.1V.1989 (UFRGS 1255); 1 9,

19 ov, 1 j, 08.X.1991 (UFRGS 1438); Viamão, 1 9, 09.11.1991 (UFRGS 1441); 1 9, 20.V1.1992

(UFRGS 1450); Viamão, Itapuã, 4 9, 2 9 ov, 20.1X.1991 (UFRGS 1446);Capivari, 10 S, 10 9, 13 9 ov,

09.11.1991 (UFRGS 1463); Cidreira, 1 5, 6 2, 4 9 ov, 09.11.1991 (UFRGS 1464); Rosário do Sul, 1 6,

10.1.1991 (UFRGS 1460); São Gabriel, 15 &, 6 9 ov, 10.1.1991 (UFRGS 1493); Caçapava do Sul, 5 &,

49,4 9 ov, 12.1.1991 (UFRGS 1487); 2 9,1 9,1 9 ov, 10.1V.1991 (UFRGS 1459); Encruzilhada do Sul,

3029 ov, 5 3, 10.1V.1991 (UFRGS 1443, 1454); Tapes, 1 6,1 2 ov, 23.11.1991 (UFRGS 1480);

Camaquã, 2 9,8 2,6 P ov, 4 j, 23.11.1991 (UFRGS 1469, 1498); Santana do Livramento, 1 9,1 9 ov,

09.1.1991 (UFRGS 1488); Bagé, 8 S, 6 9, 6 9 ov, 14.1V.1991 (UFRGS 1440); São Lourenço do Sul, 3 &,

192,1 9 ov, 23, 23.11.1991 (UFRGS 1481); Pinheiro Machado, 1 9, 09.1.1991 (UFRGS 1477); Pelotas,

4 6,1 9, 24.1.1992 (UFRGS 1475); Rio Grande, 2 9,1 2 ov, 05.1V.1991, (UFRGS 1439, 1471); Santa

Isabel do Sul, 3 0, 3 2,1 2 ov, 07.1.1991 (UFRGS 1458, 1489); Arroio Grande, 1 C', 07.1.1991 (UFRGS

1457); Rio Grande, Estação Ecológica do Taim, 13 &, 15 2, 11 2 ov, 17.11.1991 (UFRGS 1442); 17 6,

21 2, 17.VI.1991 (UFRGS 1449); 5 6,2 9, 14.VII. 1991 (UFRGS 1448); 1 6,2 9, 1 j, 27.V1.1991

(UFRGS 1461).

Distribuição. Encontrada na América do Sul entre o Espírito Santo, Brasil e Buenos

Aires, Argentina (LEMOS DE CASTRO, 1976). Espécie amplamente distribuída em Santa

Catarina e no Rio Grande do Sul (fig.65).

Discussão. B. sellowii é uma espécie bem caracterizada e ilustrada, tendo sido

objeto de um amplo estudo por LEMOS DE CASTRO (1976). Muito comum próximo a

residências humanas e encontrada também em ambientes de vegetação nativa.

BATHYTROPIDAE

Neotroponiscus daguerrii (Giambiagi de Calabrese, 1939)

(Figs. 28-38, 65)

Porcellio daguerrii GIAMBIAGI DE CALABRESE, 1939:635, lamina II

Neotroponiscus daguerrii; LEMOS DE CASTRO, 1970:94, fig.5a.

Medidas. Macho: comprimento 6,4 e largura 2,5; fêmea: comprimento 5,8 e largura

23.

Formas pequenas com pouca capacidade volvacional (fig.28). Tegumento

revestido por tubérculos pontiagudos distribuídos regularmente em fileiras transversais

(fig.28); placas de contorno oval ou retangulares formando um retículo e cerdas escamosas

de contorno oval e em forma de leque (fig.30). Nódulos laterais (fig.28). Pigmento castanho-

escuro e amarelo formando bandas longitudinais claras e escuras; presença de uma mancha

amarela alongada nos epímeros dos pereionitos. Pereiópodos despigmentados. Cabeça

com lobo mediano proeminente e linha frontal distinta (fig.29). Epímeros dos pereionitos

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

123

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ...

Figs. 29-38. Neotroponiscus daguerrii: 29, cabeça, vista frontal; 30, placas e cerdas escamosas dos

pereionitos; 31, exito da maxílula; 32, maxila; 33, maxilípodo; 34, pereiópodo 2; 35, exópodo do

pleópodo; 36, endópodo do pleópodo 1; 37, exópodo do pleópodo 2; 38, endópodo do pleópodo 2. Escalas:

fig. 29: 1 mm, figs. 30-38: 0,1 mm.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

124 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

desenvolvidos e expandidos lateralmente; ângulos ântero-laterais do pereionito I

projetados para a frente envolvendo a cabeça. Pleonitos III a V com epímeros

desenvolvidos, dando o contorno do corpo. Telso retangular. Antenas, quando distendidas

para trás, alcançam o terceiro pereionito; primeiro artículo do flagelo nitidamente menor

que o segundo. Processo incisor da mandíbula direita com 2 penicílios, esquerda com 3.

Exito da maxílula com 4+5(2 fendidos) dentes (fig.31). Lobo interno da maxila piloso e

menos desenvolvido que o externo (fig.32). Endito do maxilípodo com 2 dentes na borda

superior (fig.33). Exópodos dos urópodos podem alcançar ou ultrapassar a ponta do

telso; endópodos encobertos pelo telso raramente visíveis em vista dorsal.

Machos: somente o pereiópodo 2 com uma concentração de cerdas no mero,

carpo e própodo (fig.34). Exópodo do pleópodo 1 de contorno oval (fig.35); endópodo

provido de pequenas cerdas na margem distal interna (fig.36). Pleópodo 2 com exópodo

subtriangular (fig.37) e endópodo em estilete, com contorno irregular, apresentando uma

depressão seguida de elevação na margem externa (fig.38).

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: Porto Alegre, 53 S, 64 9, 06.VTI.1989

(UFRGS 1246); Reserva Florestal do Lami, 2 9, 08.X.1991 (UFRGS 1511); Viamão, 1 S&S, 09.11.1991

(UFRGS 1512); Barra do Ribeiro, 1 9 ov, 27.XI1.1991 (UFRGS 1513); São Lourenço do Sul, 4 0,9 9,

23.11.1991 (UFRGS 1514); Rio Grande, Estação Ecológica do Taim, 8 &, 18 2,1 9 ov, 17.11.1991

(UFRGS 1515); 6 9, 12 9,1 2 ov, 23.1V.1991, (UFRGS 1516). ARGENTINA. Entre Rios: Ilhas do

Delta do Paraná (J.B. Daguerre leg.), 1 5,3 9, vários corpos divididos ou fragmentados, 20.XI.1932

(MACN 22318 - tipos).

Distribuição. Argentina. Primeiro registro para o Brasil (Rio Grande do Sul) (fig.65).

Discussão. Encontrada em ambientes de vegetação nativa ou secundária,

associada a bromélia (Vrisea sp.), bem como em ambientes próximos a residências humanas.

Quando LEMOS DE CASTRO (1970) citou N. daguerrii não teve oportunidade

de examinar o material-tipo e baseou suas considerações somente na descrição original.

Ainda, citou N. plaumanni (Andersson, 1960) com base em exemplares coletados em

Montevidéu, Uruguai, concordando com a breve descrição de ANDERSSON (1960). RECA

(1973) forneceu uma redescrição de N. daguerrii, com base no material-tipo e em material

coletado, mais tarde, na localidade-tipo. Na ocasião, fez comparações com a descrição e

redescrição de N.plaumanni, porém sem examinar exemplares desta espécie. As ilustrações

dadas por RECA (1973) diferem muito das originais apresentadas por GIAMBIAGI DE

CALABRESE (1939). Das 4 caractecristicas diferenciais fornecidas por RECA (1973) para

N. daguerrii, concorda-se com apenas duas: pereiópodos não pigmentados e pereiópodo

2 com um conjunto de cerdas no carpo, mero e própodo. As demais, como exopoditos dos

urópodos relativamente maiores que em N. plaumanni e a forma do primeiro par de

pleópodos, não foram observadas no material examinado. Verificou-se que o tamanho dos

exopoditos é variável, às vezes atingindo o ápice do telso ou ultrapassando-o; o contorno

oval do exópodo do pleópodo 1 realmente tem a borda oval mas pode apresentar variação,

aproximando-se “da borda terminada em ângulo” descrita e ilustrada por RECA (1973).

Devido a impossibilidade de se examinar o material-tipo e exemplares de N. plaumanni e

pela semelhança entre as ilustrações de RECA (1973) e LEMOS DE CASTRO (1970), não

é possível afirmar que estas características possam ser utilizadas como diferenciais,

separando as espécies.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 125

PORCELLIONIDAE

Chave para os gêneros no sul do Brasil.

1. Lobos cefálicos proeminentes (figs.39,41,43); abdome estreitando-se gradualmente

Romprelação aofórar ce rin ee last. Porcellio

Lobos cefälicos näo proeminentes (figs.45, 47); abdome estreitando- se abruptamente

comirslação ao tórax rer sob run ab sahen ash Porcellionides

Chave para as espécies de Porcellio Latreille, 1804 no sul do Brasil.

l. _Tegumento com tubérculos que proporcionam aspecto rugoso (figs.39,41)............... 2

Tegumento com pequenas granulações concentradas na linha mediana transversal

dOSIETIBS Li gh paid-asb roer cmo-chorgelritab gua MG sm nk ade P. laevis

Ripa oiconrápice agudo (fig. 39) aeaesesneaneenessesensennennennennesn aftdcaga eba cada nenn onen P. scaber

eiso com ápice arredondado (fig. 41) ......cacsceseoserencosirecrodracesitonenoenrererermentõos P. dilatatus

Porcellio scaber Latreille, 1804

(Figs. 39,40, 66)

Porcellio scaber LATREILLE, 1804:45.

Sinonímia: consultar VAN NAME (1940); FERRARA & TAITI (1979).

Medidas. Macho: comprimento 13,3 e largura 5,8; fêmea: comprimento 13,5 e

largura 6,3.

Tegumento coberto por tubérculos que proporcionam um aspecto rugoso.

Nódulos laterais em posições semelhantes nos ângulos póstero-laterais dos segmentos.

Poros glandulares limitados a pequenos campos situados nas bordas dos pereionitos

(fig.39). Pigmento geralmente cinza-escuro uniforme, às vezes mais claro variegado, com

manchas irregulares claras, com as partes laterais dos segmentos amareladas formando

uma borda marginal. Telso triangular com o ápice alongado, estreito e agudo. Antenas,

quando distendidas para trás, atingem o terceiro pereionito. Artículos do flagelo de

tamanhos diferentes, sendo o primeiro mais curto que o segundo. Exito da maxílula com

4+6(4 fendidos) dentes. Maxilípodo com o endito quadrangular com dois dentes

proeminentes na borda superior e um dente semelhante no ângulo superior interno. Os

urópodos apresentam os exópodos lamelares e alargados, podendo ser: curtos, quando

têm o mesmo comprimento do telso; longos, quando ultrapassam o comprimento do telso.

Endópodos parcialmente encobertos pelo telso.

Machos: pereiópodo 1 com uma concentração de cerdas no mero e carpo. Exópodo

do pleópodo 1 com uma sinuosidade na linha marginal distal e com cerdas na borda

interna (fig. 40); endópodo com pequenas cerdas no ápice. Pleópodo 2 com exópodo

subtriangular; endöpodo em estilete afilando gradualmente até o ápice.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

126 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Bom Retiro, 166, 289, 18.V.1991 (UFRGS 1697); Rio

Grande do Sul: Bom Jesus, 296,319, 149 ov, 17.1.1991 (UFRGS 1694); Fontoura Xavier, 275, 179, 109 ov,

01.11.1991 (UFRGS 1692, 1693); Caxias do Sul, 1, 19, 22.IX.1990 (UFRGS 1695); São Francisco de Paula, 19 ov,

17.11.1991 (UFRGS 1696).

Distribuição. Venezuela (VANDEL, 1963), Colômbia (RICHARDSON, 1914), Chile

(LEMOS DE CASTRO, 1971), e Argentina (GIAMBIAGIDE CALABRESE, 1931); primeiro

registro para o Brasil (Santa Catarina e Rio Grande do Sul ) (fig.66).

Discussão. P. scaber € uma espécie nativa do continente Europeu introduzida

pelo homem em várias partes do mundo, aparentemente mais em regiões temperadas do

que em quentes (VAN NAME, 1936). Para LEMOS DE CASTRO (1971) os exemplares

coletados em São Paulo referidos por MOREIRA (1931) como P. scaber, talvez

correspondam na realidade a P. dilatatus e acrescenta que P. scaber não se aclimata nas

regiões quentes ou tropicais. O material examinado, coletado em ambiente urbano,

caracteriza bem a situação apresentada pelo fato de P. scaber ser uma espécie associada

a habitações humanas e ter sua distribuição em regiões frias do sul do Brasil.

Porcellio dilatatus Brandt, 1833

(Figs. 41, 42; 66)

Porcellio dilatatus BRANDT, 1833: 14.

Sinonímia: consultar VAN NAME (1940); VANDEL (1962).

Medidas. Macho: comprimento 16,7 e largura 8,6; fêmea: comprimento 17,9 e

largura 9,6.

Tegumento coberto por tubérculos que proporcionam um aspecto rugoso.

Nódulos laterais (fig.41). Poros glandulares em pequenos campos situados nas bordas

dos pereionitos. Pigmento marrom-escuro com manchas amareladas. Telso triangular com

a porção distal alongada com ápice arredondado. Antenas, quando distendidas para trás,

atingem o início do terceiro pereionito, com os artículos do flagelo de tamanho subigual.

Exito da maxílula com 4+6 (2 fendidos) dentes. Endito do maxilípodo armado com 2 dentes

na borda superior e 1 dente no ângulo superior interno. Exópodos dos urópodos lamelares,

alargados, de tamanho aproximado ao comprimento do telso; endópodos encobertos

pelo telso, não visíveis em vista dorsal.

Machos: pereiópodo 1 com um conjunto de cerdas no mero e carpo. Exópodo do

pleópodo 1 piriforme provido de cerdas tripartidas (fig.42); endópodo sem características

especiais. Pleópodo 2 com exópodo subtriangular com cerdas tripartidas; endópodo em

estilete afilando gradualmente até o ápice.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Papanduva, 18 9,27 2,1 9 ov, 17.V.1991

(UFRGS 1676); São Lourenço d'Oeste, 4 9,2 9,1 9 ov, 20.1.1991 (UFRGS 1668); Xanxerê, 3 0,2 9,1

92 ov, 20.1.1991 (UFRGS 1667); Faxinal dos Guedes, 3 9, 19.1.1991 (UFRGS 1670); Ponte Serrada, 1 G,

19 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1672); Irani, 27 S, 16 9,5 9 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1675); Santa Cecilia, 11

S, 15 9, 17.V.1991 (UFRGS 1669); Joaçaba, 10 S, 10 9, 19.1.1991 (UFRGS 1671); Itá, 1 &, 22.1.1991

(UFRGS 1666); Campos Novos, 24 9,7 9,6 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1677); Urubici, 3 0,7 9,1 9 ov,

18.V.1991 (UFRGS 1673); São Joaquim, 3 9,3 2,1 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1674); Rio Grande do

Sul: Erechim, 12 GS, 1 9, 23.1.1991 (UFRGS 1655); Coronel Bicaco, 4 9,1 92,1 9 ov, 02.11.1991

(UFRGS 1662); Casca, 2 4,2 9, 23.1.1991 (UFRGS 1660); Bom Jesus, 1 9,4 9,1 9 ov, 17.1.1991

(UFRGS 1656); Veranópolis, 13 9,25 92,3 9 ov, 23.1.1991 (UFRGS 1665); Fontoura Xavier, 1 9,

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 127

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Figs. 39-44. Porcellio scaber: 39, & dorsal; 40, exópodo do pleópodo 1. Porcellio dillatatus: 41, S dorsal:

42, exöpodo do pleópodo 1; Porcellio laevis, 43: S dorsal; 44, exópodo do pleópodo 1. Escalas: figs. 39,

41, 43: Imm; figs. 40, 42, 44: 0,2mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

128 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

01.11.1991 (UFRGS 1657); Flores da Cunha, Otávio Rocha, 5 9,5 9 ov, 21.11.1990 (UFRGS 1651);

Caxias do Sul, 7 0, 6 9,2 j, 17.V.1991 (UFRGS 1653); Garibaldi, 1 S, 1 9 ov, 23.1.1991 (UFRGS 1664);

São Francisco de Paula, 2 9, 17.1.1991 (UFRGS 1654); Santa Maria, 5 4,7 2, 05.11.1991 (UFRGS

1661); Capão da Canoa, 106,49, 19 ov, 13.X.1991 (UFRGS 1652); Tramandaí, 29, 09.111.1991 (UFRGS

1663); Porto Alegre, 2 6, 39, 16.XI1.1988 (UFRGS 1283); 1 9, 23.X11.1988 (UFRGS 1286); Tapes, 1 &,

19, 23.11.1991 (UFRGS 1658); Rio Grande, 2 3, 05.IV.1991, (UFRGS 1659).

Distribuição. Brasil: São Paulo, Minas Gerais, Rio de Janeiro e Paraná

(LEMOS DE CASTRO, 1971); primeiro registro para Santa Catarina e Rio Grande

do Sul (fig.66).

Discussão. Espécie introduzida nas Américas (VANDEL, 1952), sendo

comum em ambientes urbanos, evidenciando sua ligação com o homem.

Porcellio laevis Latreille, 1804

(Figs. 43,44, 66)

Porcellio laevis LATREILLE, 1804:46

Sinonímia: consultar VAN NAME (1936); FERRARA & TAITI (1979); TAITI & FERRARA

(1991a).

Medidas. Macho: comprimento 16,0 e largura 7,2. fêmea: comprimento

17,1 e largura 7,6.

Tegumento com pequenas granulações concentradas na linha mediana

transversal dos tergitos. Nódulos laterais (fig.43). Poros glandulares arredondados

e afastados da borda dos pereionitos. Pigmento marrom-acinzentado variegado

com manchas amarelas. Telso triangular com o ápice agudo e escavado. As antenas,

quando distendidas para trás, podem ser longas, atingindo a linha marginal posterior

do segundo pereionito ou curtas, atingindo a linha marginal anterior do segundo

pereionito. Segundo artículo do flagelo ligeiramente mais curto que o primeiro.

Exito da maxílula com 4+6 (5 fendidos)dentes. Endito do maxilípodo com 2 dentes

na borda superior e outro no ângulo superior interno. Exópodo do urópodo

subcônico podendo ser duas vezes o comprimento do telso ou menos de duas vezes

o comprimento do telso.

Machos: pereiópodo 1 com concentração de cerdas espatuladas no mero e

carpo. Exópodo do pleópodo 1 subtriangular com porção distal alongada (fig. 44);

endópodo com pequenos pêlos no ápice. Pleópodo 2 com exópodo subtriangular;

endópodo com a porção distal extremamente afilada.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Papanduva, 28 5,29 2,4 9 ov, 17.V.1991

(UFRGS 1690); Campos Novos, 7 0,7 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1691). Rio Grande do Sul: Santa

Rosa, 13 8,2 9, 4 9, ov, 03.11.1991 (UFRGS 1679); Palmeiras das Missões, 19,69,19 ov, 02.11.1991

(UFRGS 1689); Sarandi, 5 S, 29, 12 ov, 02.11.1991 (UFRGS 1681); Santo Angelo, 29,52, 22 ov, 04.11.

1991 (UFRGS 1684); São Borja, 1 4, 04.11.1991 (UFRGS 1688); Fontoura Xavier, 74,79 ov, 03.11.1991

(UFRGS 1683); Porto Alegre, 2 5,69,99 ov, 11.1X.1986 (MCNF 1754, 1757); Caçapava do Sul, 19,3

9 ov, 12.11.1991 (UFRGS 1685); Encruzilhada do Sul, 19, 89, 10.1V.1991 (UFRGS 1682); Tapes, 37 6,

549, 23.JII. 1991 (UFRGS 1680); Dom Pedrito, 109, 159, 09.1.1991 (UFRGS 1686); Bagé, 29, 09.1.1991

(UFRGS 1678); Arroio Grande, 2 9,5 9,3 2 ov, 07.1.1991 (UFRGS 1687);

Distribuição. Cosmopolita (KNOW & TAITI, 1993). Na américa do Sul,

desde a Venezuela (VAN NAME, 1936) até a Argentina (GIAMBIAGI DE

CALABRESE, 1931). Registros em Santa Catarina e Rio Grande do Sul (fig. 66).

Discussão. Na área de estudo P laevis ocorre em locais de temperatura

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138, 04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 129

elevada, em ambientes urbanos.

Chave para as espécies de Porcellionides Miers, 1877 no sul do Brasil.

1. Primeiro artículo do flagelo mais longo que o segundo (fig. 45); exópodo do

pleópodo 1 do macho piriforme (fig. 46)... P pruinosus

Artículos do flagelo de tamanhos semelhantes (fig. 47); exópodo do pleópodo

1 do macho com porção distal alongada (fig. 48) ....................... P sexfasciatus

Porcellionides pruinosus(Brandt, 1833)

(Figs. 45, 46, 47)

Porcellio pruinosus BRANDT 1833:181.

Sinonímia: consultar VAN NAME (1936); FERRARA & TATTI (1979).

Medidas. Macho: comprimento 11,3 e largura 4,1; fêmea: comprimento

12,7 e largura 4,9.

Pigmento cinza-esbranquiçado devido ao efeito das pruinosidades (quando

em vida). Nódulos laterais (fig. 45). Telso triangular com ápice agudo. Antenas

longas, quando distendidas para trás, alcançam o quarto pereionito; o primeiro

artículo do flagelo é nitidamente mais longo que o segundo. Exito da maxícula

com 4+6 (4 ou 5 fendidos) dentes. Maxilípodo com endito provido de 3 dentes na

margem superior, sendo 2 próximos ao palpo e um próximo à margem interna.

Exópodo do urópodo subcônico afilando suavemente até o ápice; endópodo curto

atingindo a terça parte do exópodo.

Machos: pereiópodo 1 com mero e carpo providos de inúmeras cerdas.

Exópodo do pleópodo 1 piriforme (fig. 46); endópodo com pequenas cerdas na

extremidade. Exópodo do pleópodo 2 subtriangular; endópodo em estilete

extremamente afilado na porção distal.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Papanduva, 1 9, 6 9, 17.V.1991 (UFRGS

1636); São Lourenço d'Oeste, 39, 22 ov, 20.1.1991 (UFRGS 1637); Anchieta, 79, 89, 149 ov, 20.1.1991

(UFRGS 1629); São Miguel d'Oeste, 16 9, 25 9, 49 ov, 20.1.1991 (UFRGS 1630); Xanxerê, 39,2 9 ov,

- 19.1.1991 (UFRGS 1632); Faxinal dos Guedes, 1 2 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1635); Ponte Serrada, 19,1

9, 19 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1640); Timbó, 25, 19, 17.V.1991 (UFRGS 1631); Chapecó, 59,5 9,3% ov,

22.1.1991 (UFRGS 1638); Catanduvas, 95, 169,119 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1627); Nova Teutônia, 36,

19, 22.1.1991 (UFRGS 1634); Joaçaba, 1 9 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1626); Pouso Redondo, 6 9,9 9,

18.V.1991. (UFRGS 1633); Itá, 2 2, 22.1.1991 (UFRGS 1628); Campos Novos, 1 $,29,19 ov, 18.1.1991

(UFRGS 1642); Major Gercino, 46, 189, 16.V.1991 (UFRGS 1641); São Bonifácio, 15,19, 16.V.1991

(UFRGS 1643); Sombrio, 19‘, 1 9, 15.V.1991 (UFRGS 1639). Rio Grande do Sul: Derrubadas, Parque

Estadual do Turvo, 2 2,3 9 ov, 02.11.1991 (UFRGS 1612); Erechim, 1 &, 23.1.1991 (UFRGS 1620);

Coronel Bicaco, 179, 129, 139 ov, 02.11.1991 (UFRGS 1614); Santa Rosa, 5 S, 7 2, 03.11.1991 (UFRGS

1615); Palmeiras das Missões, 29, 3 9, 02.11.1991 (UFRGS 1613); Sarandi, 46, 19, 02.11.1991 (UFRGS

1610); Porto Xavier, 1 9, 2 9, 03.11.1991 (UFRGS 1618); Santo Angelo, 29, 19 ov, 04.11.1991 (UFRGS

1621); São Luiz Gonzaga, 1S, 04.11.1991 (UFRGS 1623); Casca, 19, 23.1.1991 (UFRGS 1624); Fontoura

Xavier, 42 3, 419, 169 ov, 01.11.1991 (UFRGS 1559, 1625); Estrela, 19, 12, 12 ov, 01.11.1991 (UFRGS

1593); Mata, 2 3, 5 2, 05.11.1991 (UFRGS 1594); Agudo, 3 9, 05.11.1991 (UFRGS 1597); Santa Cruz do

Sul, 14, 39, 06.11.1991 (UFRGS 1598); Rio Pardo, 19, 19, 06.11.1991 (UFRGS 1608); Pantano Grande,

19,39, 06.11.1991 (UFRGS 1611); Porto Alegre, 59, 119, 23.X11.1988 (UFRGS 1287); 39, 16.111.1989

(UFRGS 1250); Viamão, 8 S, 9 9, 09.111.1991 (UFRGS 1600); Rosário do Sul, 1 9, 10.1.1991 (UFRGS

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138, 04 out. 1996

130 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

1601); São Gabriel, 10 9, 992,22 ov, 11.1.1991 (UFRGS 1602, 1607); Caçapava do Sul, 49,492,59 ov,

12.1.1991 (UFRGS 617); Encruzilhada do Sul, 29, 3%, 19 ov, 10.IV.1991 (UFRGS 1599); Tapes, 95, 25

9,4 9 ov, 23.11.1991 (UFRGS 1592, 1616); Camaquã, 3 9,6 2,1 9 ov, 23.11.1991 (UFRGS 1619);

Santana do Livramento, 1 9, 09.1.1991 (UFRGS 1605); Dom Pedrito, 21 GS, 12 9, 15 9 ov, 09.1.1991

(UFRGS 1609); Bagé, 55, 49, 29 ov, 09.1.1991 (UFRGS 1604); São Lourenço do Sul, 66, 69, 23.11.1991

(UFRGS 1622); Pinheiro Machado, 3 9, 09.1.1991 (UFRGS 1603); Rio Grande, 1 9, 1 9, 05.1V.1991

(UFRGS 1596).

Distribuição. Cosmopolita (FERRARA & TATTI, 1991a). Na América

do Sul: desde a Venezuela (VANDEL, 1952) até a Argentina (DOLLFUS, 1894;

GIAMBIAGIDE CALABRESE, 1939). No Brasil: Pará (LEMOS DE CASTRO,

1967), São Paulo (MOREIRA, 1927, 1931), Santa Catarina (ANDERSSON, 1960)

e Rio Grande do Sul (CAMARGO, 1954, 1955). Comum na área estudada (fig.

67).

Discussão. Espécie introduzida nas Américas, encontrada em ambientes

urbanos.

Porcellionides sexfasciatus (Kock, 1847)

(Figs. 47, 48, 67)

Porcellio sexfasciatus KOCK, 1847: 208, pl.8, fig. 99.

Sinonímia: consultar ZARDO & LOYOLA E SILVA (1988).

Medidas. Macho: comprimento 11,4 e largura 4,3; fêmea: comprimento

16,4 e largura: 5,0.

Tegumento coberto por séries transversais de pequenos tubérculos.

Nódulos laterais (fig. 47). Pigmento marrom-acinzentado; fêmeas com 6 faixas

transversais escuras distintas. Telso triangular com ápice pontiagudo. Antenas,

quando distendidas para trás, alcançam o quarto pereionito; artículos do flagelo

de tamanho semelhante. Exito da maxílula com 4+6 (2 com fenda simples e 3 com

fenda dupla) dentes. Endito do maxilípodo provido de 3 dentes na margem superior,

sendo o mais interno o maior. Exópodos dos urópodos subcônicos afilando

suavemente.

Machos: pereiópodo 1 com mero e carpo cerdosos. Pleópodo 1 com

exópodo subtriangular com a porção distal alongada (fig. 48); endópodo com ponta

armada de pequenos pêlos. Pleópodo 2 com exópodo subtriangular; endópodo

alongado com ponta afilada.

Material examinado. Brasil. Santa Catarina: Papanduva, 66, 149, 17.V.1991 (UFRGS 1647);

Irani, 50,69, 79, ov, 19.1.1991 (UFRGS 1646); Joaçaba, 1, 19.1.1991 (UFRGS 1648); Campos Novos,

29,39, 18.1.1991 (UFRGS 1649); Bom Jardim da Serra, 26 S, 30 2, 19.V.1991 (UFRGS 1650); Rio

Grande do Sul: Bom Jesus, 229, 429, 72 ov, 17.1.1991 (UFRGS 1644); Taquara, 19, 17.1.1991 (UFRGS

1645).

Distribuição. Brasil: Paraná (ZARDO & LOYOLA E SILVA, 1988).

Primeiro registro para Santa Catarina e Rio Gande do Sul (fig. 67).

Discussão. P sexfasciatus é uma espécie introduzida no Brasil, associada

ao homem, tendo sido espalhada em alguns lugares do Mundo. Comparativamente

não tem uma distribuição tão ampla quanto P pruinosus, restringindo-se a lugares

com temperaturas baixas. |

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138, 04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 131

Boom A 4

320 rn

46 48

Fá

ke Mg 0º N

RT,

8,07 I

‚anal

Figs. 45-53. Porcellionides pruinosus: 45, © dorsal; 46, exópodo do pleöpodo 1. P. sexfasciatus: 47, O

dorsal; 48, exöpodo do pleópodo 1. Cubaris murina: 49, S dorsal; 50, cabeça em vista frontal; 51, epimeros

dos pereionitos 1 e 2 em vista ventral; 52, urópodos e telso em vista dorsal; 53, urópodos e telso em vista

ventral. Escalas: figs. 45, 47, 49-53: 1 mm; figs. 46, 48: 0,2mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

132 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

ARMADILLIDAE

Cubaris murina Brandt, 1833

(Figs. 49-53, 67) -

Cubaris murina BRANDT, 1833:190.

Sinonímia: consultar VAN NAME (1936); FERRARA & TAITI (1979); TAITI& FERRARA (1991a).

Medidas. Macho: comprimento 8,3 e largura 4,3; fêmea: comprimento 9,7

e largura 4,9.

Corpo convexo e contrátil. Tegumento com pequenos tubérculos. Nódulos

laterais (fig. 49). Pigmento marrom-acinzentado, variando de claro a escuro com

manchas amareladas. Cabeça com a margem anterior reta (fig. 50). Pereionitos I e

II com uma proeminência na superfície interna do ângulo pöstero-lateral (fig. 51).

Telso alargado na base com uma constrição mediana seguida de uma expansão e

extremidade truncada (fig. 52). Antenas, quando distendidas para trás, não atingem

o segundo pereionito; segundo artículo do flagelo mais longo que o primeiro. Exito

da maxílula com 4+6 dentes. Endito do maxilípodo com 2 dentes conspícuos na

borda superior e ângulo interno reto. Protopoditos dos urópodos alargados,

ocupando o espaço entre as partes laterais do quinto pleonito e telso; exópodos

reduzidos, inseridos na margem interna do artículo basal; endópodos encobertos

pelo telso, visíveis em vista ventral (fig. 53).

Machos: pereiópodo 1 com conjunto de cerdas no mero e carpo. Exópodo

do pleöpodo 1 em forma de espátula; endópodo com pequenos pêlos na |

extremidade. Exópodo do pleópodo 2 subtriangular; endópodo afilado na

extremidade.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: Timbó, 1 S, 1 9, 17.V.1991 (UFRGS 1499);

Blumenau, 7 5, 5 2, 17.V.1991 (UFRGS 1500).

Distribuição. Pantropical (FERRARA & TATTI, 1991a). Primeiro registro

para Santa Catarina (fig. 67).

Discussão. Na América do Sul o registro mais ao sul procede de material

coletado em Blumenau, Santa Catarina. Possivelmente é uma espécie introduzida

no Brasil, encontrada principalmente nas áreas habitadas (LEMOS DE CASTRO,

1971). No material examinado observou-se que a espécie foi encontrada somente

em ambientes com influência antrópica, como pátios de residência e terreno baldio.

ARMADILLIDIIDAE

Chave para as espécies de Armadillidium Brant, 1833 no sul do Brasil.

1. Capacidade volvacional formando bola euesférica (fig. 57); epístoma formando

escudo triangular (fig. 55) telso com ápice truncado (fig. 56) ........ A. vulgare

Capacidade volvacional formando bola pseudoesférica (fig. 62); epístoma

projetado para cima dando a aparência de um lobo mediano quadrado (fig.

60); telso com ápice arredondado (fig. 62) .................. nennen A. nasatum

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138, 04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 133

60); telso com ápice arredondado (fig. 62)... A. nasatum

Armadillidium vulgare (Latreille, 1804)

(Figs. 54-58, 68)

Armadillo vulgaris LATREILLE, 1804:48.

Sinonimia: consultar VAN NAME (1936); FERRARA & TAITI (1979).

Medidas. Macho: comprimento 13,6 e largura 6,4; fêmea: comprimento 15,1

e largura 7,3.

Capacidade volvacional, formando uma bola (euesférica) (fig. 57). Nódulos

laterais (fig. 54). Pigmento cinza-chumbo, variando de claro a escuro e nas fêmeas

geralmente apresentando manchas amareladas. Cabeça quadrangular; epístoma

vertical formando um escudo triangular (fig. 55). Telso triangular com o ápice

truncado (fig. 56). Antenas curtas, quando distendidas para trás, não alcançam o

segundo pereionito; segundo artículo do flagelo maior que o primeiro. Exito da

maxílula com 4+6 (5 ou 4 fendidos) dentes. Maxilípodo com o endito quadrangular

com 2 dentes na borda superior. Exópodos dos urópodos triangulares; endópodos

não visíveis em vista dorsal (fig. 56).

Machos: pereiópodo 1 curto e robusto, com concentração de espinhos e cerdas

na margem interna do carpo. Exópodo do pleópodo 1 piriforme (fig. 58); endópodo

alongado e curvado na extremidade. Exópodo do pleópodo 2 subtriangular;

endópodo alongado e afilado.

Material examinado. BRASIL. Santa Catarina: São Lourenço d'Oeste, 1 2, 19 ov, 20.1.1991

(UFRGS 1582); Anchieta, 1 &, 20.1.1991 (UFRGS 1771); São Miguel d'Oeste, 1 4,1 9 ov,

20.1.1991 (UFRGS 1591); Xanxerê, 19,19, 32 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1577); Faxinal dos Guedes, 1 6,

19, 19.1.1991 (UFRGS 1586); Ponte Serrada, 1‘, 19.1.1991 (UFRGS 1583); Blumenau, 19, 29, 17.V.1991

(UFRGS 1588); Santa Cecília, 4 S, 17.V.1991 (UFRGS 1590); Mondaí, 2 9, 21.1.1991 (UFRGS 1575);

Catanduvas, 10,19, 12 ov, 19.1.1991 (UFRGS 1579); Joaçaba, 19, 19.1.1991(UFRGS 1580); Itá, 19,1

9, 22.1.1991 (UFRGS 1587); Campos Novos, 2 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1581); Florianópolis, 1 6,49,

03.1.1991 (UFRGS 1589); Lages, 1 3,1 9 ov, 18.1.1991 (UFRGS 1585); Bom Retiro, 1 G, 18.V.1991

(UFRGS 1587); Urussanga, 1 9,2 9, 19.V.1991 (UFRGS 1584); Sombrio, 2 S, 2 9, 15.V.1991 (UFRGS

1576). Rio Grande do Sul: Iraí, 1 9 ov, 21.1.1991 (UFRGS 1533); Três Passos, 19,192,19 ov, 03.11.1991

(UFRGS 1566); Erechim, 19, 29, 23.1.1991 (UFRGS 1553); Coronel Bicaco, 1,22, 12 ov, 02.11.1991

(UFRGS 1564); Santa Rosa, 1 6,79, 03.11.1991 (UFRGS 1565); Palmeira das Missões, 29,12 ov,

02.11.1991 (UFRGS 1543); Sarandi, 1 9,1 9, 02.11.1991 (UFRGS 1547); Passo Fundo, 1 6,

23.1.1991 (UFRGS 1556); Santo Ângelo, 49, 39, 29 ov, 04.11.1991 (UFRGS 1549); Panambi, 5

S, 4 2, 1991 (UFRGS 1567); São Luiz Gonzaga, 3 9,5 9,6 9 ov, 04.11.1991 (UFRGS 1540);

Casca 159,29,19 ov, 23.1.1991(UFRGS 1541); São Borja, 8&, 132, 04.11.1991 (UFRGS 1532);

Nhu-Porã, 35, 49, 19 ov, 04.11.1991 (UFRGS 1536); Veranópolis, 26, 12 ov, 23.1.1991 (UFRGS

1572); Flores da Cunha, Otávio Rocha, 1 9, 24.1.1990 (UFRGS 1530); Santiago, 3 9,1 9 ov,

05.11.1991 (UFRGS 1531); Caxias do Sul, 29, 5 2, 17.V.1992 (UFRGS 1525); Garibaldi, 19,23.1.1991

(UFRGS 1558); São Francisco, 1 S, 1 j, 17.1.1991 (UFRGS 1527); Mata, 29, 05.11.1991 (UFRGS 1559);

Agudo, 16,19, 05.11.1991 (UFRGS 1561); São Vicente do Sul, 6 9,9 9,3 9 ov, 05.11.1991 (UFRGS

1537, 1542); Santa Maria, 1 S, 05.11.1991 (UFRGS 1551); Santa Cruz do Sul, 3 9, 09.11.1991 (UFRGS

1562); Taquara, 1 &, 17.1.1991 (UFRGS 1568); Capão da Canoa, 1 9, 13.X.1991(UFRGS 1545); Rio

Pardo, 2 2, 06.11.1991 (UFRGS 1526); Tamandaí, 1 2, 09.11.1991 (UFRGS 1538); Pantano Grande, 1 6,

06.11.1991 (UFRGS 1528); Porto Alegre, 5 &,2 9, 16.111.1989 (UFRGS 1248); 37 9,5 2, 16.XI1.1988

(UFRGS 1165); 19, 2 2, 29.111.1989 (UFRGS 1264); 79,79, 49 ov, 11.1X.1989 (MCNF 1754); Rosário

do Sul,2 5,29,39 ov, 10.1.1991 (UFRGS 1571); São Gabriel, 36, 19, 32 ov, 10.1.1991 (UFRGS 1573);

Caçapava do Sul, 1 &,2 2, 03.11.1991 (UFRGS 1570); Encruzilhada do Sul, 8 6, 11 9, 10.1V.1991

(UFRGS 1538); Tapes, 106, 99, 1 j, 23.11.1991 (UFRGS 1534, 1544); Camaquã, 29,29,19ov,1j

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138, 04 out. 1996

134 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

Ne = ER

IK N dD N po

er)

EE,

Oro |

E PES IAN

fia! j

U ve

Q Ba

IN ú

u 7 Non SA

Figs. 54-63. Armadillidium vulgare: 54, S dorsal; 55, cabeça em vista frontal; 56, urópodos e telso; 57,

animal enrolado (bola euesférica); 58, exópodo do pleópodo 1. A. nasatum: 59, & dorsal; 60, cabeça em

vista frontal; 61, urópodos e telso; 62, animal enrolado (bola pseudo-esférica); 63, exópodo do pleópodo

1. Escalas: figs. 54-57, 59-62: Imm; figs. 58,63: 0,2mm.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 135

ARGENTINA

ATLANTICO

= Benthana picta

w Benthana longicornis

e Atlantoscia floridana

4 Burmoniscus meeusel

e Balloniscus sellowil w Porcellio scaber

= Neotroponiscus daguerril e Porcellio dilatatus

wPorcellio laevis

e Porcellionides pruinosus e Armadillidium vulgare

= Porcellionides sexfasclatus = Armadillidium nasatum

YCubaris murina

Figs. 64-68. Registros de ocorrência em Santa Catarina e no Rio Grande do Sul: 64, Benthana picta, B.

longicornis, Atlantoscia floridana e Burmoniscus meeusei; 65, Balloniscus sellowiie Neotroponiscus daguerrii;

66, Porcellio scaber, P. dilatatus e P. laevis; 67, Porcellionides pruinosus, P.sexfasciatus e Cubaris murina; 68,

Armadillidium vulgare e A.nasatum.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

136 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

23.11.1991 (UFRGS 1548, 1650); Santana do Livramento, 115,39, 119 ov, 09.1.1991 (UFRGS 1569, 1574); Dom

Pedrito, 10, 09.1.1991 (UFRGS 1563); 85, 59, 22.1V.1991 (UFRGS 1546); Bagé, 16, 19 ov, 09.1.1991 (UFRGS 1552);

São Lourenço do Sul, 15, 19, 23.11.1991 (UFRGS 1550); Pinheiro Machado, 1S, 09.1.1991 (UFRGS 1557); Santa

Isabel do Sul, 75, 19, 59 ov, 07.1.1991 (UFRGS 1554, 1555); Arroio Grande, 26, 69, 89 ov, 07.1.1991 (UFRGS

1535); Rio Grande, Estação Ecológica do Taim, 1, 19 ov, 17.11.1991 (UFRGS 1529).

Distribuição. Cosmopolita (K WON & TAITI, 1993). Na América do Sul: desde

a Guiana Francesa (MIERS, 1877) até a Argentina (DOLLFUS, 1894; GIAMBIAGI DE

CALABRESE, 1931; VAN NAME, 1936). No Brasil: na Bahia, Minas Gerais, São Paulo, Rio

de Janeiro (LEMOS DE CASTRO, 1971), Rio Grande do Sul (CAMARGO, 1954, 1955) e

Santa Catarina (fig.68).

Discussão. A. vulgare é comum em ambientes urbanos onde é encontrada nos

mais variados substratos, podendo também habitar em bosques de eucalipto. São

popularmente conhecidos como “tatuzinhos”, “tatuzinhos de jardim”, “tatu-bolinha” e

“mulitinha”, esta última denominação utilizada na região da Campanha no Rio Grande do

Sul pela semelhança do isópodo com o tatu mulita (Dasypus hybridus, Edentata). No

oeste catarinense “tatuzinho” refere-se às larvas da formiga-leão (Neuroptera).

Armadillidium nasatum Budde-Lund, 1885

(Figs. 59-63, 68)

Armadillidium nasatum BUDDE-LUND, 1879:6 (nomen nudum); 1885:51.

Sinonímia: consultar VAN NAME (1936).

Medidas. Macho: comprimento 13,5 e largura 5,9; fêmea: comprimento 15,7 e

largura 6,4.

Capacidade volvacional, formando uma bola (pseudo-esférica) (fig.62).

Tegumento apresentando depressões, com pigmento marrom-acinzentado, variando de

claro a escuro com faixas longitudinais amareladas. Nódulos laterais (fig.59). Pigmento

cinza com manchas amareladas. Cabeça com um entalhe mediano em forma de “V”.

Epístoma triangular projetado para cima dando a aparência de um lobo mediano quadrado

(fig.60). Primeiro pereionito mais largo do que os demais com os ângulos ântero-laterais

dirigidos para a frente. Telso subtriangular com o ápice arredondado (fig.61). Antenas,

quando distendidas para trás, não alcançam o terceiro pereionito; flagelo com os dois

artículos de igual tamanho. Exito da maxílula com 4+6 (5 fendidos) dentes. Maxilípodo com

endito quadrangular provido de 2 dentes na borda superior e 1 dente pequeno no ângulo

superior interno. Segmento basal dos urópodos não aparentes em vista dorsal; exópodos

largos e arredondados (fig.61).

Machos: pereiópodo 1 curto com concentração de espinhos e cerdas no carpo.

Exópodo do pleópodo 1 com porção distal alongada (fig.63); endópodo alongado com

pequenos lobos na extremidade. Exópodo do pleópodo 2 subtriangular; endópodo afilado

na porção distal.

Material examinado. BRASIL. Rio Grande do Sul: Santa Rosa, 11 &, 12 9, 03.11.1991

(UFRGS 1431); São Luiz Gonzaga, 21 G, 28 9, 04.11.1991 (UFRGS 1432); Santiago, 20 6, 22 9,

05.11.1991 (UFRGS 1433); Rosário do Sul, 9 3,6 9, 3 9 ov, 10.1.1991 (UFRGS 1434); Santana do

Livramento, 20 9,9 9, 31 9 ov, 10.1.1991 (UFRGS 1435); Dom Pedrito, 5 © ov, 09.1.1991 (UFRGS

1436); Bagé, 4 3,2 9 ov, 09.1.1991 (UFRGS 1437).

Distribuição. Primeiro registro para o Brasil (Rio Grande do Sul) (fig.68).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

Isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea) ... 137

Agradecimentos. À FAPERGS pela concessão de auxílio para as viagens (Processo nº 395-

90), a Aldo Mellender de Araújo pelo auxílio nos trabalhos de campo e a Ana Rossi pela confecção dos

desenhos dos machos em vista dorsal e das figuras 29, 50-53, 55-57 e 60-62.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

ANDERSSON, A. 1960. South American terrestrial isopods in the collection of the Swedish State

Museum of Natural History. Ark. Zool., Stockolm, 12(5-6):537-570.

ARAUJO, PB & BUCKUP, L. 19944. Nova espécie de Trichorhina Budde-Lund, 1908 (Crustacea,

Isopoda, Platyarthridae) do sul do Brasil. Iheringia, Série Zoologia, Porto Alegre, (77):129-134.

— . 1994b. Two new species of terrestrial Isopoda from southern Brazil. Spixiana, München, 17(3):269-274.

BRANDT,J.F. 1833. Conspectus monographiae Crustaceorum oniscodorum Latreillii. Bull. Soc. Imper. Natural.,

Moscou, 6: 171-193.

BUDDE-LUND, G. 1879. Prospectus generum specierumque Crustaceorum Isopodum

Terrestrium. Copenhagen, Jorgensen & Knudtzon. 10 p.

— |. 1885. Crustacea Isopoda terrestria per familias et genera et species descripta. Copenhagen, Nielsen

& Lydiche, Hauniae, 320 p.

— |. 1908. Isopoda von Madagaskar und Ostafrika mit Diagnosen verwandter Arten. In: VOELTZKOW, A.ed.

Reise in Ostafrika in der Jahren 903-05. Stuttgart. Wissenchaftliche Ergebnisse (Systematische Arbeiten),

v.2.p.263-308.

CAMARGO. O. R. 1954. Isopodes terrestres do Rio Grande do Sul. Revta agron., Série I, Porto

Alegre, 209- 211: 122-128.

— . 1955. “Tatuzinhos” (Crustacea, Isopoda) do Rio Grande do Sul. Porto Alegre, Secretaria de Estado dos

Negócios da Agricultura, Indústria e Comércio, v.163, p. 1-6.

DOLLFUS, A. 1894. Viaggio del dott. Alfredo Borelli nella Republica Argentina e nel Paraguai. Boll.

Musei. zool. Anat. comp. R. Univ. Torino, Torino, 9:(183) 1-3.

FERRARA, F. & TAITI, S. 1979. A check-list of terrestrial isopods from Africa (South of the

Sahara). Monitore zool. ital. (N.S.) (Suppl.), Firenze, 12:89-215.

— . 1981. Terrestrial isopods from Ascension Island. Monitore zool. ital. (N.S.) (Suppl.), Firenze, 14(13): 189-

198.

GIAMBIAGI de CALABRESE, D. 1931. Oniscoideos del Rio de la Plata. An. Mus. argent. Ciênc.

nat. Bernardino Rivadavia, Buenos Aires, 36: 417-429.

—. 1939. Contribución al estudio de los isopodos terrestres argentinos. Physis, Buenos Aires, 17:633-644.

GRUNER, H.E. 1955. Die Gattung Benthana Budde-Lund 1908. Zool. Jb. Abt. System. Okol. Geogr. Tiere,

Jena, 83(6):441- 452.

HOLTHUIS, L.B. 1947. On a small collection of Isopod Crustacea from the greenhouses of the Royal

Botanic Garden, Kew. Ann. Mag. nat. Hist., London, 13(11): 122-137.

KOCH, C.I. 1847. System der Myriapoden, mit den Verzeichnissen und Berichtigungen zu

Deutchlands Crustaceen, Myriapoden, und Arachniden. v.3, fasc.1-40, 270p.

KWON, D.H. & TAITI, S. 1993. Terrestrial Isopoda (Crustacea) from Southern China, Macao and

Hong Kong. Stuttgarter Beitr. Naturk., Ser A, Sttutgart, 490(83 S.):1-83.

LATREILLE, P.A. 1804. Histoire naturelle generale et particuliere des Crustacés et des

insectes. Dufart, Paris, v.7, 413p.

LEMOS DE CASTRO, A. 1958. Revisão do gênero Benthana Budde-Lund, 1908 (Isopoda, Oniscidae).

Arq. Mus. nac., Rio de Janeiro, Rio de Janeiro, 46:85-118.

— . 1967. Isópodos terrestres da Amazônia brasileira (Isopoda, Oniscoidea). In: SIMPÓSIO SOBRE

A BIOTA AMAZÔNICA, 5, Belem, Atas... p. 311-336.

1970. Isópodos terrestres do gênero Neotroponiscus Arcangeli (Oniscidae,Bathytropinae). Anais

Acad. bras. Cien., Rio de Janeiro, 42(1): 89-95.

1971. Isópodos terrestres introduzidos no Brasil (Isopoda Oniscoidea). Bolm Mus. nac. R. de

J., Rio de Janeiro, Zool., 282: 1-14.

. 1976. Considerações sobre a sinonimia e distribuição geográfica de Balloniscus sellowii (Brandt,

1833) (Isopoda, Balloniscidae). Revta bras. Biol., Rio de Janeiro, 36(2):391-396.

—. 1985. Considerações sobre Atlantoscia alceui Ferrara e Taiti, 1981 (Isopoda, Oniscoidea,

Philosciidae). Revta bras. Biol., Rio de Janeiro, 45(4):417-422.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

138 ARAUJO; BUCKUP & BOND-BUCKUP

MIERS, E.J. 1877. On a collection of crustacea, Decapoda and Isopoda, chiefly from South America, with

descriptions of new genera and species. Proc. zool. Soc. Lond., London, 43:653-679.

MOREIRA, C., 1927. Duas espécies novas de crustáceos isópodes terrestres do Brasil. Bolm. biol.

Lab. Parasit. Fac. Med. S. Paulo, São Paulo, 10:194-200.

— . 1931. Crustacés isopodes terrestres du Brésil. Bull. Soc. zool. Fr., Paris, 56:426-433.

RECA, A. 1973. Oniscoideos argentinos, II. Aporte al conocimiento dela subfamilia Bathytropinae

(Isopoda,Oniscidae). Physis, Buenos Aires, 32(84): 93-99.

RICHARDSON, H. 1914. Terrestrial isopods of Columbia- O. Fuhrmann et Eug. Mayor - Voyage

d'exploration scientifique en Colombie. Mem. Soc. Neuchätel. Sci. Nat., Neuchätel, 5:29-32.

TAITI, S. & FERRARA, F. 1986. Terrestrial isopods from de Oriental region 1.The genus Burmoniscus

Collinge, 1914 (Philosciidae). Monitore zool. Ital., (N.S.)(Suppl.), Firenze, 21:185-195.

1991a. Terrestrial isopods (Crustacea) from the Hawaiian Island. Bishop Mus. Occ. Papers,

Honolulu, 31:202-227.

1991b. Two new species of terrestrial isopoda (Crustacea, Oniscidea) from Ascension Island. J.

nat. Hist., Hants, 25: 901-916.

VAN NAME, G.W. 1936. The american land and fresh-water isopods crustacea. Bull. Am. Mus. nat.

Hist., New York, 71:1-534.

1940. A supplement to the american land and fresh-water isopod crustacea.Bull. Am. Mus.

nat. Hist., New York, 77: 109-142.

VANDEL, A. 1952. Étude des isopodes terrestres recoltés au Venezuela par le Dr. G. Marcuzzi, suivie

de considérations sur le peuplement du Continent de Gondwana. Memorie Mus. civ. Stor. nat.

Verona, Verona, 3: 61-203.

— . 1962. Isopodes terrestres (Deuxiême partie) In: P. LECHEVALIER ed. Faune de France. Paris.

v.66. p.417-931.

— . 1963. Isopodes terrestres recueillis en Amérique de Sur par Claude Delamare Debouteville. In:

DEBOUTEVILLE, C. & RAPOPORT, E.H. eds. Biologie de I! Amerique Australe, Etudes sur

la Faune du Sol. Paris. CNRS & CNICT. v.2. p.63-100.

VERHOEFF, K.W. 1941. Zur Kenntnis Südamerikanisher Oniscoideen. Zool. Anz., Leipzig, 133:

114- 126.

ZARDO, C.M.L. & LOYOLA E SILVA, J. 1988. Primeira ocorrência de Oniscus asellus Linné, 1758

e Porcellionides sexfasciatus (Koch, 1847) (Isopoda, Oniscoidea) no Brasil. Ciênc. Cult., São

Paulo, 40(8): 791-795.

Recebido em 10.07.95; aceito em 04.12.95.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81):111-138,04 out. 1996

ON THE TAXONOMIC VALUE OF THE MORPHOLOGY OF WING SCALES

IN SOME HELICONIINAE (LEPIDOPTERA, NYMPHALIDAE)

Ralf H. Anken !

ABSTRACT

Wing scales of particular Brazilian Heliconius erato (Linnaeus, 1758) andH. besckei (Ménétriés, 1857)

(Lepidoptera: Nymphalidae) forms were comparatively analyzed. Scales taken from the red postdiscal forewing

recto band did morphologically not differ between sexes, species or localities whereas red scales from the hind

wing verso surfaces strikingly differed between the two species investigated. Black and grey scales of each of

the taxa/sexes that were taken from the basal area of the hind wing verso surfaces differed among sexes and

among species. The findings are discussed in the context of the possible thermoregulatory and the aerodynamic

property of wing scales.

KEYWORDS. Heliconius, scales, Taxonomy, Brazil.

INTRODUCTION

One of the principal characters used in taxonomic studies on butterflies is the

morphology of the male genital apparatus. It is highly conserved within species and

therefore, its anatomical investigation normally warrants a correct identification of a

given specimen with regard to its specific status. Nonetheless, sibling species can

frequently only be discerned from each other by considering long series of each taxon,

taking into account a variety of geographical, ecological and morphological features,

particularly concerning the morphology and biology of immature stages. With regard to

adult and preserved specimens, as mostly found in collections, however, nothing but the

genital apparatus and the outer appearance can be subjected to comparative investigations

since geographical and ecological informations upon preserved specimens are normally

kept to the minimum and the larval stages are often not known. ANKEN (1995a, b) found

out, that the morphology of homologous scales (squamulae) in the sibling species Pieris

rapae (Linnaeus, 1758) and P. napi (Linnaeus, 1758), all taken in southwestern Germany,

obviously varied according to their shape. The noted differences between the scale

morphology were therefore regarded as a species-distinctive feature, the both species

1. Ludwigstr. 14, D-73249 Wernau, Germany.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 139-144, 04 out. 1996

140 ANKEN

being discernible from each other by the shape of scales rather than by the morphology

of the genital apparatus.

ANKEN & BREMEN (in press) add some information to the question, to which

extent homologous scales differ in more or less closely related nonsibling species. In

aggreement with GRODNITSKY & KOZLOV (1991), that study revealed a remarkable

taxonomic value of the scale-morphology among members of Papilionidae, since they do

not use scales as thermoregulatory elements as other butterflies and most moths do. The

morphology of Pieridae and Papilionidae scales are therefore rather due to functionally

indifferent evolutionary radiations than to an adaptation to thermoregulatory pressures.

The scale-morphology of some tropic Nymphalidae, who also might not use scales

for thermoregulation (GRODNITSKY & KOZLOV, 1991) was investigated, focusing on

sibling species of the genus Heliconius (Kluk, 1802) in order to find out, 1f they can be

discriminated by their scale morphology and to contribute to the question, what the

biological relevance of scales might be.

MATERIAL AND METHODS

The nomenclature follows SMART (1977) with regard to the subspecific rank attributed to Heliconius

melpomene phyllis (Fabricius, 1775). It is beyond the scope of this investigation to prove this systematic

positioning, but to use the names merely in order to state as exactly as possible the individual taxon, so that a

reader may discriminate and recognize them without being fogged by nomenclatural terms only intellegible to

the specialist. Therefore, all authors of a given form, subspecies and species are stated in the following, even if

this is not carried out fully according to the rules of Zoological Nomenclature. The taxa are common in Brazil.

All specimens used were collected by the author and they are deposited in his private collection.

The following forms (only fresh individuals without external signs of being worn) were investigated:

BRAZIL. Mato Grosso do Sul: Navirai, 7 S of Heliconius erato phyllis f. artifex (Stichel, 1909), 26. X.

1993.Paraná: Foz do Iguaçu, 5 O of H. besckei (Ménétriés, 1857), 26.X.1993;3 9 of Heliconius erato phyllis

f. artifex, 26. X.1993; 6 S of Heliconius erato phyllis f. artifex, 26. X.1993.

The protocol to take scales follows ANKEN (1995b). The scales to be investigated were taken from (1)

the red postdiscal forewing recto band, (2) the red spots of the basal area of the hind wing verso, and (3) from

the blackish grey vicinity ofthe scales of (2) by a moistened brush. After having been transferred to microscopical

slides, they were allowed to dry and were subsequently coverslipped using Hydromatrix. From each experimen-

tal group (i.e., species/geographical population/sex), at least three individuals were analyzed concerning the

respective morphology of the squamulae. Therefore, at least thirty individual scales per individual were drawn

using a camera lucida equipped binocular transmission light microscope at a magnification of 400x. The drawn

series-images (called SI in the following) were coded, compared to each other and any observations were noted.

The coding was employed in order to prevent the experimenter of knowing the specific name of an SI, which

might unwillingly have led to biased results. The results obtained were attributed to the respective experimental

group. The SIs in the figures comprise randomly chosen scales of randomly chosen individuals of each animal

group. In the course of extensive preliminary examinations, it had been found out, that such short SIs are

satisfactorily suited to demonstrate the general morphological appearance of the scales of a given experimental

group. Additionally to some SIs, composed images (CIs) were prepared by drawing one scale over the other by

the use of a light-plate and transparent paper. The scales of a figured CI were the same as shown in the respective

SI.

RESULTS

All scales analyzed reveal an apical field with more or less pronounced protrusions

(processi), which vary among the same individual and from species to species. All

postdiscal red forewing recto scales (figs. 1-4) are quite narrow and reveal several apical

processi. Very few scales only have two processi (fig. 1, 12th. scale; this feature has only

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 139-144, 04 out. 1996

On the taxonomic value of the morphology of wing scales ... 141

been observed in female H. erato) and also extremely broad scales with more than four

processi are uncommon but were found in all animals investigated (figs. 1-4, last scales).

Any differences between the SIs of red forewing recto scales (figs. 1-4) are more clearly

revealed regarding the respective CIs (figs. 9a-d). The CI of a female A. erato (fig. 9a:

Paraná) resembles that of male A. erato individuals (fig. 9b: Paraná; fig. 9c: Mato Grosso

do Sul), but the apical field looks not as variable as does the one in the males. The scales

apical field of a male H. besckei specimen (fig. 9d: Paraná) appears quite homogeneous,

indicating a low variety among different scales.

Red scales taken from the hind wing verso surfaces (figs. 5-8 and figs. 9e-h; SIs and

Cls, respectively) do not only morphologically clearly differ from those of the forewing

recto in being considerably larger. Moreover, they vary among the biological entities

investigated much more thoroughly than the scales described before do: in female H. erato

specimens, the scales are quite narrow and the processi are pronounced but extremely

variable concerning their particular shape (figs. 5, 9e). Male H. erato butterflies from the

same locality (Paraná) reveal broader scales and fang-like apical protrusions (figs. 6, 9f),

whereas the homologous processi in male A. erato from Mato Grosso do Sul are thumb-

like and vary considerably (figs. 7, 9g). Most strikingly, the scales from male A. besckei

from Paraná do not reveal any protrusions at all (figs. 8, 9h).

The variation among black and grey scales of each of the taxa/sexes that were taken

from the basal area of the hindwing verso surfaces is overhelmingly considerable (figs.

10-13). Nonetheless, it can be pointed out that the male H. erato specimens, although

taken at different locations, to some extent resemble each other, whereas the male A.

besckei has only two different kinds of greyish/black scales on the hind wing verso that

do not strikingly differ from the other ones of this taxon and the female H. erato has scales

not appearing in any other butterfly investigated, especially the narrow and broad giant

scales.

DISCUSSION

The red scales taken from the forewing recto only somewhat differ between

Heliconius erato and H. besckei. Their variation among male H. erato from different

localities and from male to female H. erato from the same locality is not presumed to be

significant as well. Also a comparison among red scales from the basal area from the hind

wing verso does not reveal any obvious differences among the H. erato specimens, but

homologous scales from A. besckei strikingly differ. Regarding the scaly furnishment of

the basal hind wing recto surface concerning other than red scales (i.e. greyish/black

ones), Fl. erato has a variety of differently shaped scales (especially the female), whereas

in H. besckei only some different and simply organized types of scales were found.

It 1s not yet clear, what the particular function of butterfly scales might be.

NACHTIGALL (1967) argued, that scales in specialized butterflies may contribute to the

physical basis of sailplaning. GRODNITSKY & KOZLOV (1991) proposed, that scales

might prevent a butterfly from getting water soaked or glueing to a spiders net or resin.

Most comprehensive and based on large amounts of data, however, is the theory of

GRODNITSKY & KOZLOV (1991), according to which scales may act as

thermoregulatory units. It is far beyond the scope of the given study to discuss the possible

biological relevance of the scales investigated, but to clarify their possible use for

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 139-144, 04 out. 1996

142 ANKEN

taxonomy. Nevertheless, it is intriguing that just the recto scales do not differ among the

taxa/sexes/geographical entities investigated: members of the genus Heliconius frequently

exhibit sailplaning behavior (according to NACHTIGALL, 1967, this behavior is

substantially based on the aerodynamics of recto wing scales) and they take sunbaths with

opened wings therewith exposing the recto surfaces and the respective scales to sun

radiation (as not all butterflies do: some European satyrid Hipparchia spp., e.g., try to

avoid sunshine directed to the recto surfaces but nevertheless place themselves to direct

sunlight by collecting it by the verso surface; own observations). With that, the similarity

in wing scale morphology regarding recto surfaces in Heliconius might be based on

similar evolutionary pressures, 1. e., similar functional requirements such as aerodynamics

and gathering sun radiation derived heat. Since these environmental pressures may not

affect the verso surface scales, their morphology might be due to functionally indifferent

evolutionary radiations, consequently leading to a variety of morphological different

ULDODOAOUIGO

OSLO LCD

BOOAEODLEUDE

DUDE

Figs. 1-4. Series images (SIs) of red scales. From postdiscal forewing recto band - Heliconius erato phyllis, .

Paraná: 1, 9; 2, 9; Mato Grosso: 3, 6; 4, H. besckei, Paraná, O. Bars = 25 um.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 139-144, 04 out. 1996

On the taxonomic value of the morphology of wing scales ... 143

JOGOU QN/D0A,

RR ne da

Loo

OMR) mr à

Figs. 5-13. Series images (SIs) of red scales. From hind wing verso surfaces. Heliconius erato phyllis, Paraná:

5,9; 6,5; Mato Grosso: 7 G; 8, H. besckei, Paraná, O; 9, Composed images of the SIs shown in figs. 1-8. 10-

13, ( SIs, same animals in the same order). These SIs were taken from black and grey scales that were collected

from the basal area of the hind wing verso surfaces. Bars = 25 um.)

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 139-144, 04 out. 1996

144 ANKEN

features concomitantly employed during the course of the evolution of functionally

relevant features like the recto scales, the wing shape and the male genital apparatus.

Especially functional indifferent attributes may be considered to be of taxonomic value,

since function-related ones are liable to appear in similar fashions in taxonomically

distantly related animals as analogous structures just do due to physical properties. The

arguments used above may therefore explain a finding of the present study, according to

which red scales taken from the hind wing verso basal area (which is estimated to be

funcionally irrelevant) clearly differ between H. erato and H. besckei indifferent on the

sex and the geographical locality. EMSLEY (1964, 1965) pointed out that both sibling and

conmimic species may be distinguished from each other by consulting the particular

arrangement of red spots in this wing area.

The results of the present study clearly reveal a species-specific morphology of red

scales taken from this particular wing area. Regarding individuals in doubt, an investigation

on scales of this area may therefore add further data of obviously unambiguous taxonomic

significance. An investigation of greyish/black scales of the same wing part also may

warrant a secure identification on species level since the variety of these scales seems to

be species-specific as well. Further investigations on the verso and recto scales of other

conspecific and conmimic Heliconius will add some more data on the taxonomic and

functional relevance of particular scales.

CONCLUSIONS

It is concluded, that the forms of Heliconius erato and H. besckei investigated are

discernible from each other by the shape of basal hind wing verso red scales and the

particular furnishment of this wing area with blackish scales revealing a species-specific

variety, whereas the variety among female and male H. erato 1s less distinct. These

findings, as compared to the findings regarding scales from the recto surface of the wings,

where no species-specific features were seen, may be due to different functional

requirements of verso and recto wing scales, the former being of taxonomic value.

REFERENCES

ANKEN,R. 1995a. Basal hind wing recto black scales differ morphologically in Pieris napiL. and Pieris rapae

L. Ent. Gaz., Faringdon,46: 254.

__.1995b. Zur geographischen Variabilität homologer Deckschuppen von Pieris rapae L. nebst vergleichenden

Bemerkungen zu P. napi (Lepidoptera: Pieridae). Ent. Z., Frankfurt,105:326-339.

ANKEN, R. & BREMEN, D. On the morphology of basal hind wing recto black scales in some Papilionidae

(Lepidoptera: Rhopalocera). Ent. Rec. J. Var., London, in press.

EMSLEY, M. 1964. The geographical distribution of the color-pattern components of Heliconius erato and

Heliconius melpomene with genetical evidence for the systematic relationship between the two species.

Zoologica, New York,49: 245-289.

— . 1965. Speciation in Heliconius (Lepidoptera: Nymphalidae): Morphology and geographical distribution.

Zoologica. New York,50: 191-254.

GRODNITSKY, D. & KOZLOV, M. 1991. Evolution and functions of wings and their scale covering in

butterflies and moths (Insecta: Papilionida = Lepidoptera). Biol. Zent. bl., Leipzig, 110:199-206.

NACHTIGALL, W. 1967. Aerodynamische Messungen am Tragflügelsystem segelnder Schmetterlinge.Z.

vergl. Physiol, Berlin, 54: 210-231.

SMART, P. 1977. Kosmos-Enzyklopädie der Schmetterlinge. Stuttgart, Franckh-Verlag. 279p.

Recebido em 22.05.1995; aceito em 08.01.1996

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 139-144, 04 out. 1996

ESPECIES DE NEOCHORDODES DE LA ARGENTINA

(GORDIACEA, NEMATOMORPHA)

Delma B. de Miralles !

Cristina de Villalobos !

ABSTRACT

SPECIES OFNEOCHORDODES IN ARGENTINA (GORDIACEA, NEMATOMORPHA. Up to date,

only two species of Neochordodes Carvalho, 1942, were known from Argentina, N. talensis (Camerano, 1897)

and N. uniareolatus Carvalho, 1946. Their cuticulas features are redescribed. Two new species are described:

Neochordodes bonaerensis and Neochordodes australis. Pseudochordodes meridionalis Carvalho & Feio, 1950,

is transferred to Neochordodes.

KEYWORDS. Gordiacea, Neochordodes, new species, Argentina.

INTRODUCCIÓN

El género Neochordodes fué propuesto por CARVALHO (1942) para algunas

especies anteriormente incluidas en Chordodes Creplin, 1847, basändose en la presencia

de un sólo tipo areolar y otras características cuticulares. En la Argentina, MIRALLES

(1969, 1983, 1993) aporta datos merísticos, morfológicos y de distribución de N. talensis

(Camerano, 1897) y N. uniareolatus Carvalho, 1946. Investigaciones posteriores, sobre

nuevas colectas de diferentes localidades de Argentina, nos permitieron describir dos

nuevas especies y establecer una nueva combinación para Pseudochordodes meridionalis

Carvalho & Feio, 1950.

MATERIAL Y MÉTODOS

Para el análisis de la cutícula se realizaron cortes tangenciales de la misma en la región central del

soma; se retiró el material muscular subyacente, se aclaró con lactofenol y se realizaron lavados de los trozos

cuticulares en alcohol 96%. Posteriormente fueron llevados a ultrasonido sumergidos en alcohol 100% y

observados al microscopio óptico y al microscopio electrónico de barrido JEOL JSM 100.

Los ejemplares examinados están depositados en el Museo de La Plata, Argentina (MLP).

1. Universidad Nacional de La Plata. Faculdad de Ciencias Naturales y Museo. Paseo del Bosque s/n, (1900) La Plata, Argentina.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 145-150, 04 out. 1996

146 MIRALLES & VILLALOBOS

Neochordodes Carvalho, 1942

Chordodes CREPLIN, 1847:215 (partim).

Neochordodes CARVALHO, 1942:215. Especie tipo Chordodes talensis Camerano, 1897.

Región anterior aguzada. Extremo posterior más angosto que la porción inmediata-

mente precedente. Cuerpo cilíndrico, dorso ventralmente deprimido, redondeado en la

hembra. En la mayoría de las especies el macho tiene un surco medio ventral poco pro-

fundo. Cutícula con un solo tipo de aréolas, generalmente ovoides o semicirculares. Surco

interareolar con o sin procesos hialinos, cerdas o espinas.

Neochordodes talensis (Camerano, 1897)

(Figs. 1-2)

Chordodes talensis CAMERANO, 1897: 1 - 3. Localidad tipo: Tala, Salta, Argentina; holotipo Museo Zoologico

di Torino, no examinado. Hospedador desconocido.

Neochordodes talensis; CARVALHO, 1942:215 fig. 11.

Cutícula: con aréolas redondeadas, diâmetro entre 28 y 34 um dispuestas en gru-

pos de 2, 3 ó 4, a veces aisladas otras reunidas de 5 a 6 formando series lineales o

distribución irregular (fig. 1). La aréolas con superficie lisa y forma papilar de ápice

redondeado con una altura entre 30 a 50 um. Gruesas prolongaciones que se ramificam

por la superficie cuticular formam una red de trabéculas paralelas (fig. 2). El espacio

interareolar es amplio en el que se destacan tubérculos aguzados (ta) de tamanos variables,

con una altura que llega hasta 25 um (fig. 2). Entre dos aréolas emerge un tubérculo

papilar (tp).

Dimensiones. Dos machos de 194 mm x 0,775 mm, 189 mm x 0,755 mm de largo

y ancho respectivamente; 1 macho de 155 mm de largo y 0,49 mm de ancho.

Material examinado. ARGENTINA. Salta: Quebrada del Toro, XII. 1981, Camino & J. García col., 2

S (MLP 10); Carapori, XI.1945, Bridaroli col., 1 5 (MLP 15).

Neochordodes uniareolatus Carvalho, 1946

(Figs. 3 - 4)

Neochordodes uniareolatus CARVALHO, 1946:3, figs. 21 - 23, 36. Localidad tipo: Maracay, Venezuela; holotipo

hembra, Museo de Historia Natural de Montevideo nº 29, no examinado.

Cutícula: con un tipo de aréolas con un diámetro que varía entre 17 y 24 um, de

forma poligonal, muy bajas, 2 um de altura. Superficie lisa (fig. 3), entre 2 6 3 aréolas

nace un tubérculo espiniforme (te) de 2,7 um de altura que apenas sobrepasa el alto de

las aréolas y prolongaciones claviformes (pc) de 13 um de altura, muy escasas, cuyo

äpice se arquea hacia la superficie areolar (fig. 4). El espacio interareolar sumamente

estrecho, ar&olas muy pröximas entre si.

Dimensiones. Una hembra de 2,85 mm de largo y 1,03 mm de ancho.

Material examinado. ARGENTINA. La Plata: City Bell, en natatorio, II.1994, L. De Santis col., 1 9

(MLP 96).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 145-150, 04 out. 1996

Especies de Neochordodes de la Argentina ... 147

Neochordodes meridionalis (Carvalho & Feio, 1950), comb. n.

(Figs. 5 - 7)

Pseudochordodes meridionalis CARVALHO & FEIO, 1950: 202, figs. 23 - 25. Localidad tipo: Zanja Honda,

Copaffut, Salta, Argentina, holotipo S y 36 paratipos &. 1.VII.1944, Golbach col., Museo Miguel Lillo,

Tucumän, no examinados.

Cutícula: con aréolas de estructura uniforme (fig. 5) que se ubican formando series

lineales o grupos de aréolas ovaladas con superfície completamente lisa y muy poco

elevadas, con un diámetro que varía entre 22 a 30 um y altura de 8 um. La superficie de

contacto entre dos aréolas próximas emite cortas y pequenas proyecciones que las conecta.

Surco interareolar, entre los grupos o las series, amplio. En él se observan, siempre cercanos

a las aréolas, tubérculos refringentes (tr) (fig. 6) que no sobrepasan la altura de las mismas.

En los grupos de tres aréolas a veces, sobresale una estructura papilar, cilíndrica (fig. 7).

Dimensiones: 10 machos de 274 mm x 0,768 mm, 242 mm x 0,563 mm, 253 mm

x 0,625 mm, 261 mm x 0,730 mm, 239 mm x 0,518 mm, 243 mm x 0,622 mm, 182 mm

x 0,810 mm, 198 mm x 0,786 mm, 217 mm x 0,988 mm, 270 mm x 0,923 mm y 2

hembras de 273 mm x 0,678 mm y 278 mm x 1,025 mm de largo y ancho respectivamen-

te.

Material examinado. ARGENTINA, Neuquén: Barrio Nuevo, 1 &, 28.11.1978, de Ferraris col. (MLP

17). Confluencia, 1 &, 1 2, 6.X11.1977, de Ferraris col. (MLP 18). Salta: Campo Quijano, 8 &, II.1950, Corte

col. (MLP 20); San Juan: Arroyo Tumana, 1 9, 15.X.1977, Grosso Col. (MLP 9).

Comentarios. Establecemos la nueva combinación Neochordodes meridionalis en

base al análisis de la estructura cuticular pues presenta un solo tipo de aréolas, caracterís-

tico de las especies del género Neochordodes y no dos tipos como sefialan los autores en

la descripción original.

Neochordodes australis sp. n.

(Figs. 8 - 11)

Descripción. Cilíndricos. Extremo anterior aguzado de ápice circular, boca central

terminal (fig. 8). Extremo posterior entero, curvado con cloaca ventral subterminal. Surco

longitudinal ventral marcado (fig. 9). Aréolas de un solo tipo redondeadas, distribuidas

uniformemente (fig. 10), con un diámetro de 6 a 11 um de diferentes alturas. La superficie

con apariencia escamada o arrepollada (fig. 10) y en el centro una corta prolongación

rodeada de otras mas pequefias. En la base de las aréolas se destacan escasas y finas

proyecciones que se conectan entre sí de aréola a aréola (fig. 11). Vistas de lado las

aréolas son mas bajas, papilares y de ápice semicircular casi plano (fig. 10). Surco

interareolar notorio, estrecho, que al estar perforado da un aspecto totalmente cribado; en

él sobresalen escasos tubérculos de gran longitud de punta roma levemente curvados y

que sobrepasan en altura a las aréolas (fig. 11).

Dimensiones. Holotipo s de 108 mm de largo x 0,470 mm de ancho y tres paratipos

machos de 112 mm x 0,550 mm, 120 mm x 0,490 mm y 118 mm x 0,520 mm de largo y

ancho respectivamente.

Material tipo: Holotipo& y 3 paratiposS (MLP 98), ARGENTINA, Buenos Aires, Sierra de la Ventana,

Rio Sauce Grande, 4.III. 1978, Miralles col.

Comentarios. Consideramos que N. autralis posee caracteres cuticulares peculia-

res en cuanto a su configuración que la diferencian claramente de las especies descriptas

hasta el presente.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 145-150, 04 out. 1996

148 MIRALLES & VILLALOBOS

Rs PES CLOIFE ;

Frio: 7a q

7” A h \

Figs. 1-7. Cuticula: 1,2, Neochordodes talensis (Camerano, 1897); 3, 4, N. uniareolatus Carvalho, 1946; 5 - 7

N. meridionalis (Carvalho & Feio, 1950) comb. n. Abreviaturas: a, aréola; ei, espacio interareolar; ta, tubérculo

aguzado; te, tubérculo espiniforme; tp, tubérculo papilar; tr, tubérculo refringente; pc, prolongaciones claviformes.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 145-150, 04 out. 1996

Especies de Neochordodes de la Argentina ... 149

Figs. 8 - 13. Neochordodes australis, sp. n.: 8, extremo anterior macho; 9, extremo posterior macho; 10, 11,

cutícula; 12, 13: N. bonaerensis, sp. n., cutícula. Abreviaturas: a, aréola; b, boca; c, cloaca: t, tubérculo.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 145-150, 04 out. 1996

150 MIRALLES & VILLALOBOS

Neochordodes bonaerensis sp. n.

(Figs.12 - 13)

Descripción. Cilíndricos. Extremo anterior aguzado, boca terminal, no se eviden-

cia el anillo oscuro que separa la calota del resto del soma, extremo posterior redondeado,

cloaca terminal central. Cutícula con un solo tipo de aréolas, cuadrangulares, próximas

entre sí (fig. 12), ancho entre 12 a 18 um y altura que no sobrepassa los 4 pum.

Superficie areolar plana, totalmente porosa (fig. 13) sobre alguna de ellas, un corto

tubérculo, casi en el margen de la aréola. El borde areolar más alto que la parte central;

bordes laterales aserrados a modo de empalizada y los otros dos, lisos; el borde aserrado

se contacta con las prolongaciones laterales de las aréolas vecinas (fig. 12); espacio

interareolar estrecho, profundo, en él se distinguen pequefias estructuras a modo de espinas

de ápice redondeado, pero que no alcanzan el borde libre de las aréolas.

Dimensiones: Holotipo 2 de 102 mm de largo por 0,760 mm de ancho y tres 9 de

110 mm x 0,690 mm, 118 mm x 0,740 mm y 108 mm x 0,650 mm de largo y ancho

respectivamente.

Material tipo. Holotipo 9, ARGENTINA, Buenos Aires, Otamendi, Arroyo Las Brusquitas, III.1981,

J. García col. (MLP 16); 3 paratipos 9, Sierra de la Ventana, Arroyo El Negro, X.1965, Expedición Museo col.

(MLP 25).

Comentarios. N. bonaerensis se distingue de las otras que integran el género por el

aspecto general de las aréolas, por la forma, la superficie perforada, los bordes aserrados

y la disposición de las mismas.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

CAMERANO, L. 1897. Viaggio del Dott. Alfredo Borelli nell Chaco boliviano e nella Repubblica Argentina.

Boll. Musei Zool. Anat. comp. Torino, Torino, 12 (294): 1-3.

CARVALHO, J. C. 1942. Studies on some Gordiacea of North and South America. J. Parasit., Illinois, 28 (3):

213. 2222

|. 1946. Gordiaceos do Museu de Historia Natural de Montevideo. Comun. zool. Hist. nat. Montev.,

Montevideo, 2 (32): 1 - 7.

CARVALHO, J. C. & FEIO, J. 1950. Sobre alguns Gordiaceos do Brasil e da República Argentina

(Nematomorpha, Gordioidea). Anais Acad. bras. Cienc., Rio de Janeiro, 22 (2): 196 - 216.

CREPLIN, F.C. 1847. Chordodes parasitus, ein Schmarotzerwurm aus einer Hauschrecke. Froriep's Notiz.,

Berlín, 3 (3): 161.

MIRALLES, D. A. 1969. Lista Preliminar de Gordiáceos de Argentina y Datos Biológicos sobre Neochordodes

uniareolatus Carvalho. Acta zool. lilloana, Tucumán, 24: 183 - 192.

— . 1983. Sobre la Colecciön de Gordiäceos del Museo Argentino "Bernardino Rivadavia". Neotröpica, La

Plata, 29 (81): 51 - 56.

MIRALLES, D. A. & DE VILLALOBOS,L.C. 1993. Distribución geográfica de los gordiáceos en la República

Argentina. Fauna de Agua Dulce de la República Argentina, La Plata, 13 (2): 5 - 16.

Recebido em 15.05.1995 (2º versão); aceito em 05.12.1995.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 145-150, 04 out. 1996

ULTRASTRUCTURE OF MIDGUT ENDOCRINE CELLS IN WORKERS OF

STINGLESS BEE (HYMENOPTERA, APIDAE, MELIPONINAE)

José Eduardo Serrão!

Carminda da Cruz-Landim!

ABSTRACT

The ultrastructure of endocrine cells of the midgut of two species of stingless bees is described. These

cells are basally and solitarily positioned, besides being very similar to those found in other insect orders. In

Trigona spinipes (Fabricius, 1793) they are cone-shaped while in T. hypogea Silvestri, 1902, they are club-

shaped. Their cytoplasm presents secretory granules and mitochondria concentrated in the basal portion of the

cell, in accordance with their endocrine nature. The secretory granules may be completely filled with an electron-

dense content or have a clear space between the membrane and the dense core. Lamellar bodies are present in

the apical cellular portion.

KEYWORDS. Endocrine cells, midgut, stingless bee, ultrastructure.

INTRODUCTION

Typically, the bee midgut epithelium has been reported as being formed by two

cell types: digestive or columnar cells involved in the digestive process and generative

cells scattered in nests along the midgut in the basal portion of the entire digestive

epithelium (CRUZ-LANDIM, 1985; SERRÃO & CRUZ-LANDIM, 19954). However a

third cell type was superficially described in the midgut of Apis mellifera (L.) (JIMENEZ

& GILLIAM, 1990). These cells were located basally and solitarily among columnar

cells and distinguished by the basal packing of secretory granules. The same general

structure is characteristic of the midgut endocrine cells of ten orders of insects (PRIESTER,

1971; REINHARDT, 1976; HECKER, 1977; CASSIER & FAIN-MAUREL, 1977;

ENDO & NISHIITSUTSUJI-UWO, 1981; NISHITSUTSUJI-UWO & ENDO, 1981;

BROWN et al., 1985). As vertebrate-like peptide hormones have been detected in the

insect midgut, their secretion could be tentatively attributed to these endocrine cells

1. Departamento de Biologia, Instituto de Biociências, Universidade Estadual Paulista, Campus de Rio Claro. Caixa Postal 199, 13506-900, Rio

Claro, SP, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 151-156, 04 out. 1996

152 SERRÃO & CRUZ-LANDIM

(TAGER & KRAMER, 1980; IWANAGA et al., 1981; ENDO et al., 1983; BOUNIAS

& DUBOIS, 1982; BROWN et al., 1986).

This paper presents the ultrastructure of midgut endocrine cells in two species of

neotropical stingless bees with different feeding habits.

MATERIAL AND METHODS

The species analyzed were Trigona spinipes (Fabricius, 1793) which eat pollen, and the obligate

necrophage species Trigona hypogea Silvestri, 1902.

Digestive tracts from adult workers were removed into buffered saline solution for insects, and their

midgut isolated. The pieces were fixed in 2.5% glutaraldehyde in 0.1M Na cacodylate buffer at pH 7.2, washed

twice in the buffer, post-fixed in 1% osmium tetroxide in the same buffer, dehydrated in a series of increasing

concentrations of ethyl alcohol, and embedded in Epon-Araldite resin, following usual procedures.

Ultra-thin sections were obtained with glass knives, stained with uranyl acetate and lead citrate.

RESULTS

The endocrine cells were located basally among digestive cells and never reached

to the midgut lumen, being more frequent in the middle and posterior midgut regions

(figs. 1, 3). These cells can be distinguished from digestive cells by the absence of basal

plasmic membrane infoldings and by the presence of electron-dense granules displayed

toward the basal region, near the basal lamina (figs. 1, 3).

The shape of endocrine cells was different in the studied species. They were cone-

shaped in T. spinipes (fig. 1) and club-shaped in T. hypogea (fig. 3). The spherical nucleus

with dispersed chromatin was localized in the middle-cell portion (fig. 1). Within the

cytoplasm, a rough endoplasmic reticulum surrounded the nucleus and elongated

mitochondria were concentrated in the basal cell region (figs. 2, 3). The granules’ electron-

dense content may either fill them completely or leave a clear halo between the membrane

and the dense core (fig. 2). In the apical portion, large membrane-bounded structures

filled with convoluted membranous material were present (figs. 3, 4).

DISCUSSION

The endocrine nature of the cells under study is being proposed only on a

morphological basis. The main argument for this proposal was the isolation showed by

these cells from the midgut lumen and the basal disposition of the secretory granules,

wich suggest their discharge to the haemolymph.

Variations in the shape of endocrine cells were observed between T. spinipes and

T. hypogea. These cells were also different, in their shape, from those reported in Apis

mellifera (JIMENEZ & GILLIAM, 1990). Similar results were obtained by CASSIER

& FAIN-MAUREL (1977) in a comparative study of fourteen insect species. In bees,

each species seems to have only one type of endocrine cell. In contrast, NISHIITSUTSUJI-

UWO & ENDO (1981) reported four different cellular types in Periplaneta. CASSIER

& FAIN-MAUREL (1977) observed two types in Japyx, four types in Nauphoeta and

five types in Gryllus bimaculatus. These authors classified endocrine cells according to

cytoplasm density, granule type and size, but these differences might be attributed to

different states of activity of just one cell type. The large membrane-bounded structures

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 151-156, 04 out. 1996

Ultrastructure of midgut endocrine cells... 153

Figs.1-2. Midgut endocrine cells of Trigona spinipes (Fabricius, 1793): 1, cone-shaped endocrine cell showing

the nucleus (N),mitochondria (M) and secretory granules (S). Note the absence of basal plasma membrane

infoldings (arrow) in comparison to digestive cell (DC). T. trachea. 2, detailed view of the basal portion of

endocrine cell showing completely filled secretory granules (arrows) and granules with a clear space between

membrane and matrix (arrowheads). bl, basal lamina; M, mitochondria. Bars: 1 um.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 151-156, 04 out. 1996

154 SERRÃO & CRUZ-LANDIM

Figs. 3 - 4. Midgut endocrine cells of Trigona hypogea Silvestri, 1902: 3, elongated endocrine cell showing

basal mitochondria (M), nucleus (N), nucleolus (NU), secretory granules (S) and vesicle containing membrane-

like structures (MV). 4, detailed view of vesicle (MV) containing membrane-like structures (arrows). DC,

digestive cell. Bars: 1 um.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 151-156, 04 out. 1996

Ultrastructure of midgut endocrine cells... 155

filled with membrane-like material are very similar to the lamellar bodies present in the

midgut endocrine cells of Aedes aegypti (BROWN et al., 1985) and in the neurosecretory

cells of the land snail, Lymnaea stagnalis (ROUBOS, 1984). These authors have pointed

out lamellar bodies involved in the tumover of cell membranes that are utilized during

exocytosis.

Biochemical, cytochemical and ultrastructural data have showed that endocrine

cells present in the insect midgut release hormones similar to those detected from the

gastric-intestinal tract of vertebrates (ENDO & NISHIITSUTSUJI-UWO, 1982;

BOUNIAS & DUBOIS, 1982; RAABE, 1983; ANDRIES & TRAMU, 1984; BROWN

et al., 1986). These hormones may have effects upon the regenerative cell differentiation

and enzymes production by digestive cells, as well as, upon the activity of other organs

such as the fat body and the central nervous system (BILLINGSLEY & DOWNE,

1989;BROWN et al., 1985). The similar ultrastructural organization of endocrine cells

in the midgut of stingless bees and of other insects may indicate that these cells play a

similar function in bees.

The bee workers have a diet that changes throughout their life time. As a general

rule, young bees are considered to be nurse bees and have elevated pollen consumption

whereas older bees are foragers and have high nectar consumption (SERRÃO & CRUZ-

LANDIM, 1995b). It is possible that midgut endocrine cells release factors that control

enzymes production in these different phases.

Acknowledgments. To Dr. Ronaldo Zucchi, FFCLRP - USP for making the specimens of T. hypogea

available and to CNPq (300818/95-5) for financial assistance.

REFERENCES

ANDRIES, J. C. & TRAMU, G. 1984. Detection immunohistochimique de substances apparentées à des

hormones peptidiques de mammifêres dans le mésenteron d'Aeshna cyanea (Insecte, Odonate). C. rr.

Acad. Sci., Paris, 299 (6):181-184.

BILLINGSLEY, P F. & DOWNE, E. R. 1989. The effects of artificial diets on the anterior intestinal cell

ultrastructure of Rhodnius prolixus (Hemiptera: Reduviidae). Int. J. Parasitol., Oxford, 19(3):291-299.

BOUNIAS, M. & DUBOIS, M. P 1982. Inhibition par la somatostatine de l'action hypoglycémiante de

l'insuline chez l'abeille in vivo et localisation cytochimique d'un antigêne apparenté à la somatostatine dans

l’epithelium digestif ainsi que les tubes de Malpighi de I'abeille. C. r. Acad. Sci., Paris, 294(3):1029-1034.

BROWN,M. R.; RAIKHEL, A. S. & LEA, A. O. 1985. Ultrastructure of midgut endocrine cells in the adult

mosquito, Aedes aegypti. Tissue & Cell, Edinburgh, 17(5):709-721.

BROWN, M. R.; CRIM, S. W. & LEA, A. O. 1986. FMRFamide and pancreatic polypeptide-like

immunoreactivity of endocrine cells in the midgut of a mosquito. Tissue & Cell, Edinburgh, 18(3):419-

428.

CASSIER, P. & FAIN-MAUREL, M.A. 1977. Sur la présence d'un systême endocrine diffus dans le mésenteron

de quelques insectes. Archs Zool. exp. gén., Paris, 118(2):197-209.

CRUZ-LANDIM, C. 1985. Ultra-estrutura e função do tubo digestivo dos insetos. In: SIMPÓSIO ANUAL

ACIESP, 8º, São Paulo. Anais..., ACIESP, p.28-49.

ENDO, Y. & NISHIITSUTSUJI-UWO, J. 1981. Gut endocrine cells in insects: the ultrastructure of the gut

endocrine cells of the lepidopterous species. Biomed. Res., Tokyo, 2(3):270-280.

— . 1982. Fine structure of developing endocrine cells and columnar cells in the cockroach midgut. Biomed.

Res., Tokyo, 3(4):637-644.

ENDO, Y.; SUGIHARA, H.; FUJITA, S. & NISHITSUTSUJI-UWO, J. 1983. Kinetics of columnar and

endocrine cells in the cockroach midgut. Biomed. Res., Tokyo, 4(1):51-60.

HECKER, H. 1977. Structure and function of the midgut epithelial cells in Culicidae mosquitoes (Insecta,

Diptera). Cell Tissue Res., Heidelberg, 184(2):321-343.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 151-156, 04 out. 1996

156 SERRÃO & CRUZ-LANDIM

IWANAGA, T.; FUJITA, T.; NISHIITSUTSUJI-UWO, J. & ENDO, Y. 1981. Immunohistochemical

demonstration of PP-, somatostatin-, enteroglucagon- and VIP-like immunoreactivities in the cockroach

midgut. Biomed. Res., Tokyo, 2(2):202-207.

JIMENEZ, D. & GILLIAM, M. 1990. Ultrastructure of the ventriculus of the honeybee, Apis mellifera (L.):

cytochemical localization of acid phosphatase, alkaline phosphatase and nonspecific esterase. Cell Tissue

Res., Heidelberg, 261 (3):431-443.

NISHITSUTSUJI-UWO, J. & ENDO, Y. 1981. Gut endocrine cells in insects. The ultrastructure of the

endocrine cells in the cockroach midgut. Biomed. Res., Tokyo, 2 (1):30-44.

PRIESTER, W. De 1971. Ultrastructure of the midgut epithelial cells in the fly Calliphora erythrocephala. J.

Ultrastruct. Res., Orlando, 36(5-6):783-805.

RAABE,M. 1983. The neurosecretory-neurohaemal system of insects: anatomical, structural and physiological

data. Adv. Insect Physiol., New York, 17:205-303.

REINHARDT, C. A. 1976. Ultrastructural comparison of the midgut epithelia of fleas with different feeding

behavior pattern (Xenopsylla cheopis, Echidnophaga gallinacea, Tunga penetrans, Siphonaptera, Pulicidae).

Acta trop., Amsterdam, 33(2):105-132.

ROUBOS, E. W. 1984. Cytobiology of the ovulation-neurohormone producing neuroendocrine caudo-dorsal

cells of Lymnaea stagnalis. Int. Rev. Cytol., San Diego, 89:295-346.

SERRÃO, J. E. & CRUZ-LANDIM, C. 1995a. Gut structures in adult workers of necrophorous neotropical

stingless bees (Hymenoptera: Apidae:Meliponinae). Entomol. Gen., Stuttgart, 19(4):261-265.

— . 1995b. Camparative size and histology of the proventriculus and midgut among the female castes and

males of Saptotrigona postica Latreille, 1804 (Hymenoptera: Apidae:Meliponinae). Biociências, Porto

Alegre, 3(2):85-94.

TAGER, H. S. & KRAMER, K.J. 1980. Insect glucagon-like peptides: evidence for a high-molecular weight

form in midgut from Munduca sexta (L.). Insect Biochem., Oxford, 10(3):617-619.

Recebido em 1°.12.1995; aceito em 25.06.1996.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (81): 151-156, 04 out. 1996

157

ERRATA

GRAZIA & CAMPOS, 1996, Iheringia, Ser. Zool. (80): 18, legenda das figs. 3- 21.

Figs. 3-21. 3, 4, artículos tarsais, dorso-lateral. 3, H. meridionalis, sp. n.; 4, H. ditarsus,

sp.n.; 5 - 8,H. meridionalis, sp. n.,5, pigóforo: 5, dorso-posterior; 6, ventral; 7, posterior.

8, segmento X, lateral; 9-12, A. ditarsus, sp. n., S, pigóforo: 9, dorso-posterior; 10,

ventral; 11, posterior. 12, segmento X, lateral; 13-15, H. meridionalis, sp. n., 5, phallus:

13, ventral; 14, dorsal; 15, lateral. 16-18, A. ditarsus, sp. n., 9, phallus: 16, ventral; 17,

dorsal;18, lateral; 19, 20, placas genitais, 2, ventral; 19, H. meridionalis, sp. n.; 20, H.

ditarsus sp. n.; 21, H. meridionalis, sp. n., 2, placas gemtais, receptaculum seminis e

Ausenwand, ventral. (bd, bordo dorsal; caa, crista anular anterior; cap, crista anular

posterior; ch, chitinellipsen; cs, capsula seminalis; dr, ductus receptaculi; eiv,

espessamento da íntima vaginal; es, espiráculo; esg, espessamento secundário da gonapöfise

9; febv, folheto externo do bordo ventral; fibv, folheto interno do bordo ventral; g9,

gonapófise 9; gc8, gonocoxito 8; gc9, gonocoxito 9; las, laterotergito 8; la9, laterotergito

9: m, membramblase; or, orificium receptaculi; pc, processus capitati; pi, pars

intermedialis; plb, placa basal; prcl, processo 1 da conjuntiva; prc2, processo 2 da

conjuntiva; prc3, processo 3 da conjuntiva; prc4, processo 4 da conjuntiva; prphl,

processo 1 da phallotheca; prph2, processo 2 da phallotheca; prv, processo da vesica;

VII, 7° urosternito; X, segmento X).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (81): 157, 04 out. 1996

Pallotti

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