| TAXONOMIA DA SUBFAMÍLIA CORINNINAE (ARANEAE, CORINNIDAE)

| NAS REGIÕES NEOTROPICAL E NEÁRTICA!

Alexandre Bragio Bonaldo?

ABSTRACT

TAXONOMY OF THE SUBFAMILY CORINNINAE (ARANEAE, CORINNIDAE) IN

| NEOTROPICAL AND NEARTIC REGIONS. The subfamily Corinninae is characterized and diagnosed. Two

synapomorphies are hypothesized for the subfamily, both regarding the male palpal reservoir, which is primarily

| coiled and presents a sclerotized distal sector. Seventeen genera are recognized, six of which are new: Abapeba

| (type species Corinna lacertosa Simon), Erendira (type species Corinna pallidoguttata Simon), Septentrinna

| (type species Corinna bicalcarata Simon), Simonestus (type species Diestus validus Simon), Tapixaua (type

| species 7º callida sp. nov.) and Tupirinna (type species T. rosae sp. nov.). The genera Creugas Thorell, Falconina

| Brignoli and Paradiestus Mello-Leitão are revalidated. Diestus Simon and Lausus Simon are newly synonymized

| with Corinna C. L. Koch. Chemmis Simon is included in the synonymy of Megalostrata Karsch. Hypsinotus L.

| Koch is removed from the synonymy of Corinna and included in the synonymy of Creugas. Thirteen new species

| are described: Septentrinna yucatan and S. potosi from Mexico; Tupirinna rosae from Venezuela and Brazil;

| Tapixaua callida from Brazil and Peru; Abapeba hoeferi, A. rioclaro, A. taruma, Corinna ducke, C. colombo,

| €. mourai, C. recurva and Parachemmis manauara from Brazil; Creugas lisei from Brazil, Argentina and Uruguay.

Twenty seven species are redescribed. Fifty eight new combinations are presented: from Chemmis, Septentrinna

| steckleri (Gertsch); from Corinna, Abapeba abalosi (Mello-Leitão), A. cleonei (Petrunkevitch), A. echinus

(Simon), A. grassima (Chickering), A. guanicae (Petrunkevitch), A. lacertosa (Simon), A. luctuosa (F. O. Pickard-

Cambridge), A. lugubris (Schenkel), A. pennata (Caporiacco), A. kochi (Petrunkevitch), A. saga (F. O.

Pickard-Cambridge), A. wheeleri (Petrunkevitch), Creugas annamae (Gertsch & Davis), C. apophysarius

(Caporiacco), C. bajulus (Gertsch), C. bellator (L. Koch), C. bicuspis (F.O. Pickard-Cambridge), C. epicureanus

| (Chamberlin), C. falculus (F. O. Pickard-Cambridge), C. mucronatus (F. O. Pickard-Cambridge), C. navus (F. O.

Pickard-Cambridge), C. nigricans (C. L. Koch), C. plumatus (L. Koch), C. praeceps (F. O. Pickard-Cambridge),

| €. silvaticus (Chickering), C. uncatus (F. O. Pickard-Cambridge), Erendira luteomaculatta (Petrunkevitch), E.

| pallidoguttata (Simon), E. subsignata (Simon), Falconina albomaculosa (Schmidt), F. crassipalpis (Chickering),

F. gracilis (Keyserling), Megalostrata raptrix (L. Koch), Paradiestus egregius (Simon), P. giganteus (Karsch),

P. penicillatus (Mello-Leitäo), P. vitiosus (Keyserling), Septentrinna bicalcarata (Simon), S. paradoxa (F. O.

Pickard-Cambridge), S. retusa (F. O. Pickard-Cambridge), Simonestus pseudobulbolus (Caporiacco), S. robustus

| (Chickering), S. semiluna (F.O. Pickard-Cambridge), Stethorrhagus maculatus (L. Koch) and Xeropigo smedigari

(Caporiacco); from Diestus, Corinna alticeps (Keyserling), C. kochi(Simon), Simonestus occidentalis (Schenkel),

S. separatus (Schmidt) and S. validus (Simon); from Lausus, Corinna grandis (Simon) and Abapeba sicarioides

1. Tese de Doutorado, Curso de Pós-Graduação em Ciências Biológicas da Universidade Federal do Paraná (Bolsa CAPES).

2. Depto de Zoologia, Museu Paraense Emílio Goeldi, C. Postal 399, CEP 66040-170, Belém, Pará, Brasil (bonaldo O museu-goeldi.br).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

A BONALDO

(Mello-Leitäo); from Medmassa, Corinna andina (Simon) and C. venezuelica (Caporiacco); from Megalostrata,

Erendira atrox (Caporiacco) and Erendira pictitorax (Caporiacco); from Parachemmis, Tupirinna trilineata

(Chickering). Five combinations are restaured: Corinna aenea Simon, Creugas cinnamius Simon, Creugas gulosus

Thorell, Falconina melloi (Schenkel), Paradiestus aurantiacus Mello-Leitäo. Twenty five new Synonymies are

proposed: Diestus altifrons Mello-Leitäo with Corinna nitens (Keyserling); Corinna tomentosa Simon, C.

tridentina Mello-Leitão, Hypsinotus flavipes Keyserling, A. humilis Keyserling and Xeropigo scutulatus Simon

with Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge); Corinna cribosa Mello-Leitäo and C. stigmatica Simon with

Falconina gracilis (Keyserling); Corinna casueta Chickering with Simonestus separatus (Schmidt); Corinna

abnormis Petrunkevitch, C. antillana Bryant, C. consobrina Simon, C. inornata Kraus, C. nervosa F. O. Pickard-

Cambridge, C. wolleboeki Banks, Creugas cetratus Simon, C. senegalensis Simon and Hypsinotus gracilipes

Keyserling with Creugas gulosus Thorell; Chemmis frederici Simon, Delozeugma formidabile O. Pickard-

Cambridge, D. mordicans O. Pickard-Cambridge, Megalostrata sperata Kraus and M. venifica Karsch with

Megalostrata raptrix (L. Koch); Megalostrata lohmanderiCaporiacco with Erendira atrox (Caporiacco); Corinna

tenubra Chickering with Parachemmis fuscus Chickering. One new name, Creugas berlandi, ıs erected for Corinna

bellatrix Schmidt. Males of Creugas cinnamius, Corinna kochi, Methesis semirufa Simon, Paradiestus

aurantiacus, Septentrinna steckleri and Xeropigo smedigari, the females of Paradiestus giganteus, Septentrinna

bicalcarata and the adult female of S. steckleri are described for the first time.

KEYWORDS. Corinninae, Corinnidae, Araneae, Neotropical, Taxonomy.

INTRODUÇÃO

A família Corinnidae é um grupo cujo monofiletismo ainda está em discussão.

KarscH (1880) reconheceu-o como uma subfamília de Drassoidae. No entanto, prevaleceu

a opinião de Simon (1897a), de que esta seria uma subfamília de Clubionidae. O conceito

de Corinnidae como família distinta somente consolidou-se a partir de LEHTINEN (1967),

que evidenciou a artificialidade de Clubionidae. Atualmente, o status de família para

Corinnidae é amplamente aceito, mas este consenso ocorreu mais pela fragmentação de

Clubionidae do que pelo aumento do conhecimento dos subgrupos de Corinnidae. A

primeira hipótese formal de monofiletismo para Corinnidae foi proposta por PENNIMAN

(1985), que sugeriu a perda da apófise média no bulbo do palpo do macho como uma

sinapomorfia da família. BoNALDO (1997) rejeitou esta hipótese, indicando que o gênero

neotropical /anduba Bonaldo e os africanos Mandaneta Strand, Procopius Thorell e

Pseudocorinna Simon apresentam apófise média. Considerou estes quatro gêneros como

Corinnidae insertae sedis, os quais compartilham com outros corinídeos bótriuns com

a placa anterior rebaixada e a borda da placa crescente alongada, caráter hipotetizado

como sinapomorfia da família.

As relações de Corinnidae com outras famílias ainda não são bem compreendidas.

LeHriNEN (1967) propôs a hipótese de que Corinnidae integraria a superfamília

Zodarioidea, juntamente com Palpimanidae e Zodariidae. PENNIMAN (1985) estabeleceu

uma relação de grupo-irmão entre Corinnidae e Gnaphosidae, na linhagem Dionycha,

ao lado de Anyphaenidae e Clubionidae. LEHTINEN (19964) incluiu Corinnidae em um

grupo de relações não-resolvidas, juntamente com Liocranidae, Trachelidae (=Trachelea

Simon, Corinnidae) e Phrurolithinae, esta considerada por PLaTNICK (1989) como uma

subfamília de Liocranidae. Também são obscuras as relações entre as subfamílias de

Corinnidae e as próprias definições destas. Além de Corinninae, apenas outra subfamília

está formalmente estabelecida, Castianeirinae, um grupo claramente monofilético

proposto por REiskIND (1969). Um terceiro grupo, dos gêneros relacionados com Trachelas

L. Koch, é bem conhecido do ponto de vista taxonômico (PLATNICK & SHADAB, 1974a, b;

Prarnick, 1975; PLATNICK & EwinG, 1995), mas não recebeu status de subfamília. LEHTINEN

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 5

(1996a), sem justificativas, referiu-se a este grupo como Trachelidae.

BonatDo (1997) considerou Corinninae um grupo artificial tal como até então

constituído, restringindo a subfamília äqueles corinideos com ducto tegular

primariamente helicoidal e ausência de apófise média no tégulo do palpo do macho.

Sugeriu que a distribuição da subfamília seria originalmente neotropical, supondo que,

além das poucas espécies ocorrentes no sudoeste dos Estados Unidos, provavelmente

todos os registros de Corinninae fora desta região referem-se a espécies neotropicais

antropocóricas, tais como Creugas gulosus Thorell e Xeropigo tridentiger O. Pickard-

Cambridge.

A taxonomia da subfamília Corinninae na Região Neotropical é fruto do acúmulo

de informações sobre diversidade observado entre o final do século XIX e a primeira

metade do século XX; reflete concepções antigas, tais como a adoção de sistemas artificiais

de caracteres e a prática de descrever faunas regionais. Assim, o gênero Corinna, proposto

por C. L. Koch (1842), tem servido meramente como um depositário artificial de espécies.

Tentativas de dividir o gênero têm sido rejeitadas, como atesta a lista de nomes genéricos

em sinonímia com Corinna (Hypsinotus L. Koch, Creugas Thorell, Phanoptilus Thorell,

Pranopis Thorell, Tranquilinus Mello-Leitão e Falconina Brignoli). O gênero Xeropigo,

erigido por O. PrekarD-CAMBRIDGE (1882) para abrigar uma espécie ocorrente na Ilha de

Santa Helena, foi retirado da sinonímia de Corinna por Benorr (1977). Falconina Brignoli

(substituto para Falconia Schenkel, pré-ocupado em Hemiptera) foi considerado sinônimo

de Corinna por MÜLLER & HEIMER (1988), pela simples afirmação de que a morfologia

geral e os órgãos copulatórios da espécie-tipo são indicativos de que esta pertence a

Corinna.

Apesar da opção consensual pela manutenção de Corinna como um táxon

abrangente, o status de vários nomes genéricos pouco utilizados nunca foi contestado.

Ao menos dois destes gêneros incluem aranhas com caracteres derivados óbvios,

Megalostrata, estabelecido por KarscH (1880), cujos machos apresentam quelíceras

excepcionalmente longas e Stethorrhagus, proposto por Simon (1896), historicamente

reconhecido pela presença de escavações esternais em ambos os sexos. Outros gêneros

são de diferenciação obscura. Simon (1896) erigiu Methesis, comparando-o com

Castianeira Keyserling, mas REIskIND (1969), ao caracterizar Castianeirinae, considerou

Methesis um provável Corinninae. Simon (1898) propôs Lausus e Diestus para espécies

anteriormente vinculadas a Corinna. MELLo-LEITÄo (1915) estabeleceu Tranquilinus e

Paradiestus, ambos monotipicos, sinonimizados com Corinna por MELLo-LeiTAo (1925).

Posteriormente, MELLo-LEITAo (1947) transferiu Paradiestus para a sinonimia de Diestus.

Devido à indefinição das famílias estabelecidas pela fragmentação de Clubionidae,

alguns Corinninae foram indevidamente incluídos em Liocranidae. BONALDO & BRESCOVIT

(1994), na revisão de Stethorrhagus, transferiram Parachemmis, proposto por CHICKERING

(1937), de Liocranidae para Corinninae. Ambos os gêneros compartilham com Tupirinna

gen. nov. escavações esternais e uma apófise ventral apical na tíbia do palpo do macho.

O gênero Attacobius Mello-Leitão, para o qual foi estabelecida a tribo Attacobiini, em

Liocraninae, Clubionidae, por RoewEr (1954), foi transferido para Corinninae por

Prarnick & BapristA (1995). Ecitocobius, proposto por BONALDO & BRrEscoviT (1997),

compartilha com Attacobius a ausência de sérrula nos enditos e a presença de um processo

tegular putativamente exclusivo no palpo do macho. A espécie-tipo de Chemmis, gênero

estabelecido por Simon (1898) e listado em Liocraninae (Clubionidae ou Liocranidae),

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6 BONALDO

foi baseada na fêmea da espécie-tipo de Megalostrata, gênero cuja inclusão em

Corinninae nunca foi contestada.

BonaLDoO (1996), ao redescrever a espécie-tipo de Corinna, propôs como

sinapomorfia do gênero o bulbo do palpo do macho com condutor esclerotinizado,

indicando que grande parte das espécies arrolada em Corinna apresenta condutor hialino,

um caráter presente em diversos grupos de Araneomorphae e, portanto, putativamente

plesiomórfico. Assim, evidencia-se a necessidade de exclusão de um grande número de

espécies atualmente em Corinna, sendo imprescindível reconhecer a identidade de todos

os nomes genéricos disponíveis em Corinninae.

Apresenta-se a caracterização da subfamília Corinninae, reconhecendo-se dezessete

gêneros, que compartilham os caracteres propostos como diagnósticos para este grupo

por BonaLpo (1997). Dos seis nomes genéricos atualmente listados sob a sinonimia de

Corinna, revalidam-se Creugas e Falconina, transferindo-se três para a sinonímia de

Creugas, os objetivos Phanoptilus e Pranopise o gênero Hypsinotus, mais antigo, porém

homônimo júnior de um táxon de peixes. Mantém-se a sinonímia do monotípico

Tranquilinus com Corinna, considerando-se a espécie-tipo, T. benefaciens, uma species

inquirenda. Propõe-se a revalidação de Paradiestus e a sinonimização de Lausus e

Diestus com Corinna e de Chemmis com Megalostrata. São propostos seis gêneros

novos: Abapeba, Erendira, Septentrinna, Simonestus, Tapixaua e Tupirinna.

MATERIAL E MÉTODOS

O material listado pertence às seguintes instituições, com as respectivas siglas (nome dos curadores

entre parênteses). AMNH, American Museum of Natural History, New York (N. I. Platnick); BMNH, The

Natural History Museum, London (P. D. Hillyard); CAS, California Academy of Sciences, San Francisco (C. E.

Griswold); CLP, Coleção Aracnológica da Reserva Natural de La Planada, La Planada (C. Valderrama); CPC,

coleção particular de J. C. Cokendolpher, Lubbok; CPDC, Centro de Pesquisas do Cacau - CEPLAC, Itabuna

(P. S. Terra); CPS, coleção particular de M. A. Gonzales-Sponga, Caracas; CRB, coleção particular de R. L. €.

Baptista, Rio de Janeiro (no MNRJ); CPU, coleção particular de D. Ubick, San Francisco; IBSP Instituto Butantan,

São Paulo (A. D. Brescovit); INPA, Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Manaus (C. Magalhães); IRSN,

Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique, Bruxelles (L. Baert); MACN, Museo Argentino de Ciencias

Naturales “Bernardino Rivadavia”, Buenos Aires (C. Scioscia); MCN, Museu de Ciências Naturais, Fundação

Zoobotânica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre (E. H. Buckup); MCTP, Museu de Ciências e Tecnologia,

Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Porto Alegre (A. A. Lise); MCZ, Museum of Comparative

Zoology, Cambridge (H. W. Levi); MHCI, Museu de História Natural “Capão da Imbuia”, Curitiba (J. M. Leite);

MHNB, Museum d' Histoire Naturelle Bale, Basel (A. Hänggi); MLP, Museo de La Plata, La Plata (CE. S. de

Licitra); MNHN, Museum National d'Histoire Naturelle, Paris (C. Rollard); MNRJ, Museu Nacional,

Universidade Federal do Rio de Janeiro, Rio de Janeiro (A. B. Kury); MPEG, Museu Paraense Emílio Goeldi,

Belém (A. Y. Harada); MRAC, Musée Royal de L’Afrique Centrale, Tervuren (R. Jocqué); MUCV, Museo de

Biologia, Universidad Central de Venezuela, Caracas (R. Candia); MUSM, Museo de Historia Natural,

Universidad Nacional de San Marcos, Lima (D. Silva D.); MZSP, Museu de Zoologia, Universidade de São

Paulo, São Paulo (E. Cancello); NHMW, Naturhistorisches Museum Wien, Wien (J. Grüber); SMF,

Forschungsinstitut Senckenbers, Frankfurt (M. Grasshoff); SMNK, Staatlisches Museum für Naturkunde Karlsruhe,

Karlsruhe (H. Höfer); UA, Universidade do Amazonas, Manaus (N. O. Aguiar); UEFS, Universidade Estadual de

Feira de Santana, Feira de Santana (I. Biondi); UFPB, Universidade Federal da Paraíba, João Pessoa (C. F. Martins);

UNESP, Universidade Estadual Paulista, Campus de Botucatú, Botucatú (I. M. P. Rinaldi); ZMB, Zoologisches

Museum, Berlin (J. Dunlop); ZMH, Zoologisches Museum, Hamburg (G. Rack).

Todas as medidas são expressas em milímetros (mm). A metodologia utilizada nas mensurações é a descrita |

em BonaLDO (1994). A curvatura da fila ocular anterior é referida em vista frontal e a da posterior, em vista dorsal.

A altura da carapaça representa o valor máximo no espécime mensurado. O comprimento dos artículos das pernas

foi medido como indicado por Lise (1981, fig. 1). O número e disposição dos espinhos das pernas são expressos de

acordo com a notação de PETRUNKEVITCH (1925). A espinulação é apresentada integralmente em cada descrição de |

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 7

espécie. O palpo do macho foi expandido por imersão em solução aquosa de hidróxido de potássio (KOH) a 10%,

em temperatura ambiente, por um período de 12 a 24 horas. As vistas prolateral e retrolateral do palpo do macho

expandido referem-se ao posicionamento do címbio, independentemente do grau de rotação atingido pelo bulbo

em cada preparação. Para exame da vulva, o epigino foi destacado do abdômen e examinado imerso em óleo de

cravo. O termo “espermatecas primárias” refere-se às estruturas onde se conectam os ductos de fertilização e o

termo “espermatecas secundárias” às estruturas ligadas aos ductos copulatórios. As fotomicrografias foram obtidas

em microscópios eletrônicos de varredura, no MCN (Jeol JSM-5200) e no “Laboratorium fiir

Elektronenmikroskopie” da Universidade de Karlsruhe, Alemanha (Cambridge Stereoscan 73654).

Abreviaturas utilizadas nas descrições e ilustrações: AC, abertura de copulação; Ac, fúsulas das glândulas

aciniformes; Amp, fúsulas da glândula ampular principal; amp, fúsulas da glândula ampular secundária; AER,

área esclerotinizada distal do reservatório; ATR, apófise tibial retrolateral; ATV, apófise tibial ventral apical; BES,

bolsa epiginal de Septentrinna; BVE, bolsa vulvar de Erendira; Ci, Címbio; Cil, fúsulas das glândulas cilíndricas;

C, condutor; d, dorsal; DAC, divisão apical do êmbolo de Creugas; DF, ducto de fertilização; E, êmbolo; EP,

espermatecas primárias; ES, espermatecas secundárias; F, fundus; FLA, fiandeira lateral anterior; FLP, fiandeira

lateral posterior; FMP; fiandeira média posterior; HB, hematódoca basal; HM, hematódoca média; LD, lobo dorsal

da apófise tibial retrolateral; LV, lobo ventral da apófise tibial retrolateral; OLA, olhos laterais anteriores; OLP,

olhos laterais posteriores; OMA, olhos médios anteriores; OMP, olhos médios posteriores; p, prolateral; P, pecíolo;

PCp, processo cimbial basal prolateral; PCr, processo cimbial basal retrolateral; PEC, processo embolar mediano

de Creugas; PEF, processo embolar basal de Falconina; PET, processo embolar de Tupirinna; PMS, projeção

mediana da ATR de Septentrinna; Pi, fúsulas das glândulas piriformes; PLP, processo laminar retrolateral de

Parachemmis; PST, processo subtegular de Tapixaua; PTA, processo tegular de Attacobiini; PTC, processo tegular

de Corinna; PTd, processo tegular dorso-retrolateral; PTF, processo tegular de Falconina; PTM, processo tegular

de Megalostrata e Erendira; PTP, processo tegular de Paradiestus; PTS, processo tegular de Septentrinna; PTX,

processo tegular de Xeropigo; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral; PVP, placa vulvar posterior;

QOM, quadrângulo ocular médio; r, retrolateral; R, reservatório; ST, subtégulo; STd, porção distal do subtégulo

de Tapixaua; STp, porção proximal do subtégulo de Tapixaua; T, tégulo; Ti, tíbia; v, ventral.

Corinnidae Karsch

Corinnidae KarscH, 1880:374 (sie, subfamília), sênero-tipoCorinna C. L. Koch, 1842.

Drassoidae: KarscH, 1880:374; KEvSERLIng, 1891:27 (partim).

Clubionidae; Simon, 1897a:20; F. ©. PrckarD-CAMBRIDGE, 1899:61; PETRUNKEVITCH, 1923:176; 1928:55;

ROEWER, 1942:139; 1954:476; Bonner, 1956:1164. BricnoLI, 1983:546 (partim).

Corinnidae: LEHTINEN, 1967:292: PLATNICK, 1989:446; 1993:617; 1997:724: BonaLDO, 1997:166.

Myrmeciidae; WUNDERLICH, 1986:28; 1987:237 (pré-ocupado em Insecta).

Nota: O primeiro autor a estabelecer um nome do grupo-família para aranhas

atualmente incluídas em Corinnidae, foi C. L. KocH (1851), que propôs o grupo

“Myrmecides” com base em Myrmecium Latreille, 1824, gênero atualmente arrolado

em Castianeirinae, Corinnidae. Dada a identidade dos radicais dos nomes Myrmecia

Fabricius, 1805, gênero-tipo de Myrmeciinae, Insecta, e Myrmecium, REISKIND (1983)

propôs à Comissão Internacional de Nomenclatura a validação da grafia Mirmeciuminae,

em substituição a Castianeirinae. Entretanto, como reiterado por PLarnIck (1989), existem

nomes do grupo-família disponíveis e em uso (Corinnidae e Castianeirinae). O nome

Corinninae, proposto por KarscH (1880) como subfamília de Drassoidae (subfamília

Corinnidae (sic)), teve uso consagrado no século XX como subfamília de Clubionidae.

Diagnose. Representantes de Corinnidae são reconhecidos pela seguinte

combinação de caracteres: cefalotórax e pernas, em geral, fortemente esclerotinizados;

oito olhos em duas filas (figs. 3, 5, 136, 229), exceto Ecitocobius, com dois (BONALDO &

Brescovir, 1997, fig. 7); duas unhas tarsais; pêlos subungueais simples, em tufos

geralmente densos (figs. 27-29, 31, 32); base das tricobótrias com placa basal rebaixada

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8 BoNALDO

e placa crescente com borda alongada, projetada sobre a placa basal em ângulo agudo

(figs. 57-66; BonaLDO & BrEscovIT, 1994, fig. 4e; 1997, fig. 5; PLATNICK & BAPTISTA,

1995, fig. 2; BonarDo, 1996, fig. 5; 1997, figs. 2-6); espiráculo traqueal inconspicuo,

contiguo äs fiandeiras (figs. 74, 75); traqueias restritas ao abdömen; fiandeiras laterais

anteriores cônicas, contíguas na base, sem dimorfismo sexual (figs. 77, 80, 83, 86), com

artículo distal curto; fêmeas com três fúsulas das glândulas cilíndricas nas fiandeiras

médias posteriores e duas nas laterais posteriores (Cil, figs. 78, 79, 84, 85, 87, 88),

exceto em alguns traquelíneos, com mais de três fúsulas das glândulas cilíndricas nas

fiandeiras médias posteriores; tégulo do palpo do macho sem apófise média (figs. 89-

117), exceto em Janduba (BonaLpDo, 1997, figs. 12-14, 23) e outros gêneros de Corinnidae

incertae sedis.

Corinninae Karsch

Corinnidae KarscH, 1880:374; gênero-tipo, Corinna C. L. Koch, 1842.

Corinninae; KEYSERLING, 1891:66; Simon, 1897a:177; F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899:62: PETRUNKEVITCH,

1928:177,;, MELLo-LeitAo, 1947:285: ROoEwER, 1942:139: 1954:581; Bonner, 1956:1218; BRIGNOLI,

1983:555; BonALDo, 1997:166.

Corinneae;Sımon, 1897a:190; 1903:1039.

Diagnose. Representantes de Corinninae säo reconhecidos pela seguinte

combinação de caracteres: queliceras geniculadas (figs. 144, 173, 252, 312, 318), exceto

em Methesis e em machos de Megalostrata (figs. 295, 303); tíbias e metatarsos com

espinhos ventrais dispostos em pares (fig. 297). Palpo do macho sem apófise média,

com condutor hialino ou esclerotinizado, exceto em Megalostrata, sem condutor, e

reservatório de percurso helicoidal, com uma área esclerotinizada distal (AER, figs. 90,

92,99, 112), próxima à base do êmbolo. Epígino com uma ou duas aberturas de copulação

(AC, figs. 121, 316); vulva com espermatecas secundárias, visíveis por transparência,

geralmente grandes (ES, fig. 126), exceto em Methesis, Erendira e Tupirinna, sem

espermatecas secundárias.

Caracterização. Aranhas araneomorfas, enteléginas, ecribeladas, de porte variável,

comprimento total (machos e fêmeas) 2,65-22,1. Carapaça suboval, com estreitamento

cefálico acentuado (figs. 5, 8, 136, 172) ou subquadrangular (Corinna e Simonestus),

com estreitamento cefálico pouco evidente (fig. 143, 251); região cefálica com laterais

geralmente arredondadas (figs. 162, 192,215); em Corinna, laterais infladas e projetadas

(figs. 3, 136, 137, 143); geralmente mais alta que a torácica, exceto em Tapixaua e

Methesis, pouco mais baixa que a torácica (fig. 295); rebaixamento posterior abrupto

(figs. 1, 144) ou gradual (figs. 173, 252); sulco torácico longitudinal; clípeo de altura

variável (figs. 137, 288, 296), com rebordo pronunciado; sulco clipeal presente em

Parachemmis (fig. 330), Tupirinna e em alguns Stethorrhagus. Oito olhos heterogêneos

em duas filas de quatro, a anterior de comprimento menor que o da posterior (figs. 3, 5,

7,172, 192); fila anterior procurva (figs. 288, 296) ou reta; fila posterior procurva (figs.

8, 162), reta ou recurva (figs. 3, 136); QOM subquadrado (fig. 4); olhos médios anteriores

geralmente maiores que os demais; tubérculo interocular, mediano, anterior, geralmente

presente (fig. 8); olhos laterais, em geral, dispostos em cômoro (fig. 2). Chilum inteiro

ou bipartido, raramente semibipartido (na fêmea de Stethorrhagus archangelus Bonaldo

& Brescovit) ou bituberculado (em algumas espécies de Corinna do grupo kochi, fig. 9).

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 9

| Quelíceras, em geral, geniculadas, usualmente mais acentuadamente em fêmeas; com

| dimorfismo sexual acentuado em Megalostrata, Erendira e em algumas espécies de

| Tupirinna, nos machos muito maiores que nas fêmeas (figs. 303, 318); face retrolateral

| com (figs. 15, 18) ou sem (figs. 10, 16) estrias transversais subdistais; em Paradiestus,

| com sulco longitudinal conspícuo; região proximal com pêlos serrilhados, inseridos em

| tubérculos (fig. 17; BonaLDO & BrEscoviT, 1994, figs. 2a, c, d) ou raramente seriados,

| com inserções sulcadas (algumas espécies de Corinna do grupo kochi, figs. 10-12);

| côndilo basal geralmente conspícuo, subtriangular (figs. 144, 163, 252), em machos de

| Megalostrata, subquadrangular (fig. 303); reduzido em Attacobius, ausente em

| Ecitocobius (BONALDO & BrEscovir, 1997, fig. 8); promargem do sulco ungueal com 3

| dentes, o mediano maior; exceto em Attacobius, Tapixaua e Tupirinna rosae sp. nov.,

| com 2 dentes; retromargem com 2 a 6 dentes (figs. 13-16, 18-20); garra geralmente

| longa (em machos de Megalostrata, excepcionalmente longa, fig. 303), raramente

(Simonestus) curta (fig. 16). Enditos mais longos que largos, levemente convergentes,

| promargem com escavação longitudinal e escópula apical, retromargem levemente

| côncava ou reta (fig. 21); sérrula composta por única fila de dentículos (figs. 23, 24),

| ausente em Attacobius e Ecitocobius. Lábio livre, com entalhes subproximais nas margens

laterais e sulcos obliquos subproximais na face ventral (fig. 22; BoNaLDO & BRESCOVIT,

1994, fig. Id; BonALDo, 1996, fig. 15); margem apical reta ou levemente côncava; mais

| longo que largo ou tão longo quanto largo; raramente (Attacobius, Ecitocobius, Falconina

| e Septentrinna) mais largo que longo. Esterno mais longo que largo ou quase tão largo

| quanto longo, escutiforme, com bordas esclerotinizadas; triângulos pré e intercoxais

| presentes; em Stethorrhagus, Parachemmis e Tupirinna, com um par de escavações

laterais anteriores (figs. 25, 26; BonaLDO & BREscoVIT, 1994, figs. Ib,c; 15a; 18c) rasas

| ou profundas.

| Pernas prögradas, robustas ou delgadas; comprimento relativo geralmente 4123

ou 1423; variável em Corinna, Septentrinna, Simonestus e Tupirinna. Em geral,

trocanteres I e II não-recortados, III e IV com entalhe raso. Tegumento geralmente

piloso; pouco piloso em Corinna e Simonestus; usualmente com pêlos plumosos (“feathery

hairs”), pouco modificados (figs. 39, 41) na maioria dos gêneros; com poucas ramificações

em Paradiestus, Falconina e Septentrinna (figs. 40, 42, 43); com haste e ramificações

achatadas e alargadas em algumas espécies de Creugas (fig. 44; LEHTINEN, 19964, fig.

20); com haste achatada e poucas ramificações proximais em algumas espécies de

Parachemmis (figs. 55, 56; BONALDO & BRrEscovIT, 1994, figs. 3b,c); em Ecitocobius,

com extensões imbricadas (“stiff feathery setae”, BonaLDO & Brescovit, 1997, figs. 2,

4); em Abapeba, pernas e abdômen densamente cobertos por pêlos clavados, fortemente

sulcados longitudinalmente e geralmente serrilhados (figs. 45-50); em Tapixaua, fêmures,

patelas e tíbias I com longos pêlos pseudo-escopulares, espatulados, de superfície papilada,

* dispostos em filas dorso e ventro-laterais (figs. 51-53, 288). Em geral, escópulas densas

(figs. 33-35) ou esparsas (fig. 36) nos tarsos e metatarsos I e II e nos tarsos III e IV,

* ausentes nos metatarsos III e IV; em Xeropigo, Abapeba, Falconina, Septentrinna,

* Erendira, Creugas e Tupirinna, escópulas do tarsos III e IV substituídas por cerdas

espiniformes (fig. 38); em Tapixaua e Methesis, escöpulas ausentes em todos os

metatarsos e, nos tarsos, substituídas por cerdas espiniformes; metatarsos III e IV

com aglomerado de cerdas longas ventro-distais (fig. 37); tarsos com duas unhas

pectinadas, dentículos variáveis em número e forma (figs. 27-32); em Parachemmis,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

10 BONALDO

unhas com dentes grandes (fig. 32); em algumas espécies de Falconina, Septentrinna,

Creugas e Abapeba, com poucos dentes curtos (fig. 29; PETRUNKEVITCH, 1930, fig. 80);

onychium conspícuo, globular (figs. 29, 31); tarso do palpo da fêmea clavado, com

unha pouco pectinada ou lisa. Tricobótrias presentes nas tíbias, metatarsos e tarsos; em

geral, dispostas dorsalmente em uma fila no metatarso e duas filas no tarso; em

Simonestus validus (Simon), tarso IV com um aglomerado subapical de tricobótrias

(fig. 65); base tricobotrial com placa basal rebaixada e placa crescente com poucos

sulcos e borda alongada, projetada sobre a placa basal em ângulo agudo (figs. 57-66);

borda da placa crescente elíptica, circundando completamente a placa basal em Corinna

ducke sp. nov., C. recurva sp. nov., Septentrinna yucatan sp. nov. e Simonestus validus

(figs. 58, 59, 64, 66), Attacobius attarum (Roewer) (PLATNICK & BAPTISTA, 1995, fig. 2)

e Ecitocobius comissator Bonaldo & Brescovit (BonALDo & BrEescovir, 1997, fig. 5).

Órgão tarsal (figs. 67-72) capsulado, com abertura circular ou subcircular; geralmente

subapical (BonaLpo & Brescovir, 1994, fig. 4c); posicionado no ápice do tarso em

Abapeba (fig. 70). Tegumento dos tarsos, na região das tricobótrias e do órgão tarsal,

geralmente liso ou com poucos sulcos (figs. 57-64; 66-71); sulcado em Attacobius

(PLaTNICK & BAPTISTA, 1995, figs. 1, 2) eEcitocobius (BONALDO & BrEscoviT, 1997, figs.

5, 6); fortemente sulcado em Stethorrhagus (BonaLDO & Brescovir, 1994, figs. 4d-f);

anastomosado em Tapixaua callida sp. nov. (fig. 72).

Abdômen suboval; um par de pulmões, com espiráculos amplos, de bordas

esclerotinizadas (fig. 73); scutum dorsal, quando presente, mais desenvolvido nos

machos; scutum ventral apenas nos machos de algumas espécies de Corinna; sistema

traqueal simples, traquéias restritas ao abdômen; espiráculo traqueal contíguo às

fiandeiras (figs. 74, 75); tubérculo traqueal presente em Megalostrata, Erendira,

Methesis, Parachemmis, Tupirinna (figs. 75, 76), Stethorrhagus (BONALDO & BRESCOVIT,

1994, fig. 6e) e em algumas especies de Corinna; cölulo geralmente conspicuo,

proeminente, com cerdas simples, variäveis em nümero (figs. 74, 76). Seis fiandeiras;

laterais anteriores (FLA) sem dimorfismo sexual; medias posteriores (FMP) e laterais

posteriores (FLP) sexualmente dimörficas, fêmeas com füsulas das glândulas cilíndricas

(Cil, figs. 78, 79, 84, 85, 87, 88); FLA cônicas, contíguas na base, divergentes ou

paralelas, biarticuladas, artículo distal truncado, com duas fúsulas da glândula ampular

principal (Amp) na margem mesial e múltiplas fúsulas das glândulas piriformes (Pi,

figs. 77, 80, 83, 86); FMP tubulares, contíguas, paralelas, uniarticuladas, com duas a

quatro fúsulas da glândula ampular secundária (amp), poucas fúsulas das glândulas

aciniformes (Ac) e, nas fêmeas, três fúsulas das glândulas cilíndricas (Cil, figs. 78, 84,

87); FLP tubulares, separadas, paralelas, biarticuladas, artículo distal truncado, com

múltiplas fúsulas das glândulas aciniformes e, nas fêmeas, duas fúsulas das glândulas

cilíndricas (Cil, figs. 79, 85, 88). Tubérculo anal pouco proeminente, com abertura

elipsóide de bordas esclerotinizadas.

Palpo do macho. Fêmur com leve curvatura prolateral; espinulação d0-0-1 (ou

dO-1-1), p0-0-1, r0; em algumas espécies de Stethorrhagus, com um agrupamento distal

retrolateral de espinhos modificados (BonaLDo & Brescovir, 1994, figs. 5a,b; 15c).

Patela sem apófises, aproximadamente tão longa quanto larga; em alguns Stethorrhagus,

com um agrupamento de espinhos modificados na face retrolateral (BONALDO & BRESCOVIT,

1994, figs. Sa; 16b). Tíbia de comprimento menor que o comprimento do címbio; apófise

tibial retrolateral (ATR) presente; simples ou dividida em lobos ventral (LV) e dorsal

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| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 11

VE a

Figs. 1-8. Corinninae, machos, carapaça. Corinna ducke sp. nov.: 1, 2, lateral; C. recurva sp. nov.: 3, 4, dorsal; Creugas

gulosus (Thorell): 5, 6, dorsal; Tupirinna rosae sp. nov.: 7, dorsal; Parachemmis manauara sp. nov.: 8, dorsal.

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12 BONALDO

Figs. 9-14. Corinninae, machos. Corinna ducke sp. nov.: 9, chilum, frontal (dissecado); 10-12, quelicera, retrolateral

(11, 12, detalhes do campo proximal de pêlos serrilhados); C. nitens (Keyserling): 13, quelicera, retrolateral;

Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge): 14, quelicera, retrolateral.

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 13

a oamm 980922

Figs. 15-20. Corinninae, machos, quelíceras, retrolateral. Septentrinna yucatan sp. nov.: 15: Simonestus separatus

| (Schmidt): 16, 17 (17, detalhe do campo proximal de pêlos serrilhados); Creugas gulosus (Thorell): 18;

Parachemmis fuscus Chickering: 19; Tupirinna rosae sp. nov.: 20.

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14 BoNALDO

*1:0008

15V Re E TT 15SkU x350

Figs. 21-26. Corinninae, peças bucais e esterno. Corinna rubripes C. L. Koch: 21, endito, ventral; 22, lábio,

ventral; C. ducke sp. nov.: 23, sérrula do endito, dorsal; Parachemmis manauara sp. nov.: 24, sérrula do endito,

dorsal; 25, esterno, ventral; 26, detalhe da escavação látero-anterior do esterno, ventral.

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 15

1S5kU “3580 À m 200215

Figs. 27-32. Corinninae, ápice dos tarsos, lateral. Corinna nitens (Keyserling): 27, tarso I; Creugas gulosus

(Thorell): 28, tarso I; Abapeba lacertosa (Simon): 29, tarso I; A. grassima (Chickering): 30, unha do tarso I; A.

rioclaro sp. nov.: 31, tarso I; Parachemmis manauara sp. nov.: 32, tarso IV.

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16 BONALDO

19#+m 888531

Figs. 33-38. Corinninae, pernas, lateral. Corinna nitens (Keyserling): 33, metatarso I; Simonestus validus (Simon):

34, ápice do metatarso e base do tarso I; 35, pêlos escopulares do metatarso I; Falconina gracilis (Keyserling): 36,

tarso 1; 37, ápice do metatarso e base do tarso IV; 38, ápice do tarso IV.

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 17

Ri. 200

Figs. 39-44. Corinninae, perna I, pelos plumosos. Xeropigo tridentiger(O. Pickard-Cambridge): 39, tarso, dorsal;

Paradiestus giganteus (Karsch): 40, metatarso, dorsal; Falconina gracilis (Keyserling): 41, metatarso, dorsal;

42, metatarso, lateral; Septentrinna yucatan sp. nov.: 43, tíbia, lateral; Creugas gulosus (Thorell): 44, tarso,

dorsal.

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18 BONALDO

“VE |) tes Ê n A 4 - N 4 e ; é EEE À > 2.

Figs. 45-50. Abapeba gen. nov., machos, pêlos clavados. A. lacertosa (Simon): 45, metatarso I, dorsal; A. rioclaro

sp. nov.: 46, fêmur I, retrolateral; 47, metatarso I, retrolateral; 48, abdômen, ventral; A. grassima (Chickering):

49, ápice do metatarso e base do tarso I, retrolateral; 50, abdômen, dorsal.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 19

Figs. 51-56. Corinninae, machos, pernas, lateral. Tapixaua callida sp. nov.: 51-53, tíbia I (52, 53, detalhes dos

pêlos pseudo-escopulares dorso-laterais); Parachemmis fuscus Chickering: 54, metatarso I; P manauara sp.

nov.: 55, metatarso IV, 56, fêmur I.

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20 BONALDO

“X3. 500 das SKU x3. 500

Figs. 57-62. Corinninae, base das tricobótrias, tarso I, dorsal. Corinna nitens (Keyserling): 57; C. ducke sp. nov.:

58;C. recurva sp. nov.: 59; Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge): 60; Paradiestus giganteus (Karsch):

61; Abapeba grassima (Chickering): 62.

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 21

Figs. 63-70. Corinninae, tarsos, dorsal. Falconina gracilis (Keyserling): 63, tarso I, tricebötria e órgão tarsal;

Septentrinna yucatan sp. nov.: 64, tarso I, base da tricobótria; Simonestus validus (Simon): 65, tarso IV, aglomerado

de tricobótrias; 66, tarso IV, base da tricobötria; Corinna nitens (Keyserling): 67, órgão tarsal, tarso I, subapical;

Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge): 68, órgão tarsal, tarso I, subapical; Paradiestus giganteus (Karsch):

69, órgão tarsal, tarso I, subapical; Abapeba lacertosa (Simon): 70, órgão tarsal, tarso I, apical.

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2» BONALDO

18#rm voasSse MSKkUV “5. 808 809422

ES]

Figs. 71-76. Corinninae, tarso I e abdômen. Simonestus validus (Simon): 71, órgão tarsal, dorsal, subapical;

Tapixaua callida sp. nov.: 72, órgão tarsal, dorsal, subapical; Corinna ducke sp. nov.: 73, espiräculo pulmonar,

ventral; C. nitens (Keyserling): 74, espiräculo traqueal e cölulo, postero-ventral; Parachemmis manauara sp.

nov.: 75, tuberculo e espiräculo traqueais, postero-ventral; Tupirinna rosae sp. nov.: 76, tubérculo traqueal e

cólulo, ventral.

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Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 23

Figs. 77-82. Corinna nitens (Keyserling), fiandeiras, apical; fêmea, 77-79; macho, 80-82: 77, 80, lateral anterior;

78, 81, media posterior; 79, 82, lateral posterior. Abreviaturas: Ac, füsulas das gländulas aciniformes; Amp,

- fúsulas da glândula ampular principal; amp, füsulas da glândula ampular secundária; Cil, füsulas das glândulas

cilíndricas; Pi, fúsulas das glândulas piriformes.

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24 BONALDO

Figs. 83-88. Corinninae, fiandeiras, fêmeas. Parachemmis manauara sp. nov.: 83-85; Tupirinna rosae sp. nov.:

86-88. 83, 86, lateral anterior; 84, 87, média posterior; 85, 88, lateral posterior. Abreviaturas: Ac, fúsulas das

glândulas aciniformes; Amp, fúsulas da glândula ampular principal; amp, fúsulas da glândula ampular secundária;

Cil, fúsulas das glândulas cilíndricas; Pi, fúsulas das glândulas piriformes.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 25

(LD), os quais podem apresentar subdivisões; ATR simples em Corinna (figs. 120, 128,

140, 146), Abapeba (figs. 189, 198, 208), Simonestus (figs. 254, 258), Megalostrata

(figs. 305, 311), Parachemmis (figs. 332, 336), Tupirinna (figs. 340, 345), Paradiestus

giganteus (Karsch) (fig. 179) e Erendira atrox (fig. 321); dividida em LV e LD em

Xeropigo (figs. 165, 169), Falconina (figs. 212, 217), Septentrinna (figs. 231, 243),

| Creugas (figs. 268, 281), Tapixaua (fig. 291), Methesis (fig. 299), Stethorrhagus

(BONALDO & BrEscoviT, 1994, figs. 13b, 16b), Ecitocobius e Attacobius (BONALDO &

Brescovir, 1997, figs. 11, 13), Paradiestus aurantiacus Mello-Leitäo (fig. 175) e Erendira

pallidoguttata (Simon) (fig. 315). Processo ventral da ATR (PV), geralmente em forma

de gancho, reconhecível em Ecitocobius e Attacobius (BonaLDO & Brescovir, 1997,

figs. 10, 12), Xeropigo (figs.158, 164), Abapeba (figs. 183, 185), Falconina (figs. 212,

223), Tapixaua (figs. 286, 287), Methesis (fig. 298) e em algumas espécies de Corinna

(figs. 127, 145), Stethorrhagus (BONALDO & BrescovIt, 1994, figs. 20b, 22b) e Tupirinna

(fig. 339); em Septentrinna, conspícuo no grupo yucatan (figs. 238, 243), ausente no

grupo bicalcarata (figs. 231, 235); em ambos os grupos, com uma projeção mediana

entre os lobos ventral e dorsal (PMS, figs. 231, 243, 248); em Paradiestus, PV

reconhecível em P. aurantiacus (fig. 175); em Creugas, conspicuo no grupo gulosus

(figs. 261, 271) e de difícil reconhecimento no grupo bellator (figs. 276, 281); em

Corinna, Abapeba e Ecitocobius, de inserção basal; nos demais gêneros, apical ou

subapical; ausente em Parachemmis, Simonestus, Megalostrata e Erendira. Tíbia com

apófise apical ventral (ATV), em Stethorrhagus (fig. 115; BonaLDo & BrEscoviT, 1994,

figs. 9b, 12b), Parachemmis (figs. 324, 335) e Tupirinna (figs. 327, 344), articulada em

Parachemmis e Tupirinna, semi-articulada, com a face retrolateral fusionada à tíbia,

em Stethorrhagus. Címbio (Ci) em geral ovalado, com escópula dorsal apical; processo

cimbial basal retrolateral (PCr) geralmente presente (fig. 91), muito desenvolvido em

Falconina e Septentrinna (figs. 223, 238); ausente em Paradiestus, Tapixaua, Erendira,

Stethorrhagus, Parachemmis, Tupirinna e nos grupos rubripes e capito de Corinna;

Processo cimbial basal prolateral (PCp) geralmente presente; especialmente desenvolvido

em Paradiestus (fig. 174) e nos grupos lacertosa e abalosi de Abapeba (figs. 188, 197).

Alvéolo amplo, visível no palpo não-expandido das espécies de Corinna do grupo kochi

(figs. 127, 132). Hematódoca basal (HB, figs. 89-117) muito desenvolvida, opaca,

conectada diretamente à porção retrolateral do tégulo. Pecíolo (P, figs. 96, 99, 106, 114)

* geralmente grande, esclerotinizado, subquadrangular ou subtriangular; pouco

desenvolvido em Megalostrata (fig. 110). Subtégulo (ST, figs. 89-117) semicircular,

muito esclerotinizado, sem traços de anelli, com um prolongamento mediano que confere

forma de “T” à estrutura; inteiro, exceto em Tapixaua, composto por duas peças

| independentes (STd e STp, figs. 102, 103); hematödoca média (HM, figs. 89, 92, 96,

99, 105) muito reduzida, indistinta retrolateralmente, conectando prolateralmente

subtégulo e tégulo. Fundus (F, figs. 89, 92, 93, 111, 114), pouco desenvolvido,

_ interiorizado em um processo dorso-retrolateral do tégulo (PTd), exceto em Creugas

(fig. 107, 109), Erendira (fig. 113) e algumas espécies de Stethorrhagus (fig. 115) e

Tupirinna (fig. 118), amplo, interiorizado no subtégulo. Tégulo (T, figs. 89-117) amplo,

geralmente deprimido dorso-ventralmente; em espécies do grupo kochi de Corinna (figs.

90, 133), globular, restrito à metade proximal do alvéolo; processo tegular dorso-

retrolateral, visível apenas no palpo expandido, geralmente desenvolvido (PTd, figs.

89, 92, 97, 105); em alguns grupos com ápice em gancho (figs. 97, 100, 104); reduzido

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

26 BONALDO

em espécies que apresentam reservatório pouco espiralado (figs. 102, 108, 113).

Reservatório (R, figs. 89-117) geralmente longo, disposto helicoidalmente na porção

proximal do tégulo; porção distal com área esclerotinizada (AER), formando um nódulo

junto à inserção do êmbolo (figs. 89-93, 99, 101, 115); em Creugas (figs. 267, 280) e

Tapixaua (fig. 290), reservatório de comprimento reduzido, descrevendo apenas uma

volta em “S”: em Erendira (figs. 314, 320), pouco espiralado, com percurso ventral

descrevendo um “S” transversal, com a porção terminal passando adjacente à segunda

dobra.

Modificações tegulares: processo tegular de Corinna (PTC) subapical, geralmente

de inserção prolateral; no grupo rubripes, curto, amplamente ligado ao tégulo (figs. 89,

120); nos grupos kochi e aenea, amplo, laminar e virguliforme (figs. 90, 91, 154, 155);

no grupo capito, robusto, digitiforme (figs. 92, 145). Processo tegular de Xeropigo (PTX,

figs. 93,94, 159, 164), subapical, de base pouco esclerotinizada, intimamente associado

ao êmbolo e ao condutor. Processo tegular de Paradiestus (PTP, figs. 95, 174, 182),

apical, fusionado à base do êmbolo. Processo tegular de Falconina (PTF, figs. 101,

211), laminar, mediano. Processo tegular de Septentrinna (PTS, figs. 104, 105, 239,

240) tubular, prolateral, subapical, de ápice bífido. Processo tegular de Megalostrata e

Erendira (PTM), prolateral, de ápice romboidal em Megalostrata (figs. 110, 304) e

agudo em Erendira (figs. 112, 314). Processo tegular de Attacobiini (PTA, BoNaLDO &

Brescovir, 1997, figs. 10, 12), presente em Attacobius e Ecitocobius, longo, retrolateral,

inserido medianamente no tégulo e de base e ápice livres.

Condutor (C, figs. 89-117), geralmente hialino, não-modificado; em Corinna,

esclerotinizado, com margem prolateral dobrada ventralmente, formando uma calha

onde se encaixa o êmbolo (figs. 89-92, 153-155); em Xeropigo, esclerotinizado, com

ambas as margens, prolateral e retrolateral, projetadas, formando uma calha mediana

onde se encaixa o êmbolo (figs. 93, 94, 159); em Paradiestus (figs. 95, 182), Abapeba

abalosi (Mello-Leitão) (fig. 197) eMethesis (figs. 298), membranäceo; em Megalostrata,

ausente. Embolo (E), em geral, de inserção prolateral; em alguns Stethorrhagus (BONALDO

& Brescovir, 1994, figs. 14a, 22a), Paradiestus (fig. 174) e Erendira (fig. 314), inserção

mediana ou sub-retrolateral. Êmbolo filiforme em Corinna (figs. 89-92, 153, 155),

Xeropigo (figs. 93, 94), Paradiestus (figs. 174, 182) e Parachemmis (figs. 325, 326,

331); espiniforme em Falconina (fig. 216), Megalostrata (figs. 111, 310), Tupirinna

(figs. 328, 344), Attacobius e Ecitocobius (BONALDO & BRrEscoviT, 1997, figs. 10, 12);

lamelar em Septentrinna (figs. 104, 105, 239); em Abapeba, espiniforme nos grupos

lacertosa e grassima (figs. 97, 100), lameliforme, com um processo prolateral mediano,

no grupo abalosi (fig. 99, 197, 199); em Stethorrhagus, de forma variável, de ápice

bifido (fig. 115; BonarDo & Brescovir, 1994, figs. 5c, 12b, 19a); em Falconina, inserido

em um processo basal com prolongamento retrolateral (PEF, figs. 101, 212, 217); em

Tupirinna, com um processo basal alongado curvo (PET, figs. 328, 339, 343); em Creugas,

com dois tipos de modificações: divisão apical (DAC, fig. 106) e processo mediano

(PEC, fig. 108); em C. gulosus, com ambas as modificações (figs. 262, 267); em C.

cinnamius, com DAC, sem PEC (fig. 271); no grupo bellator (figs. 275, 280), sem

DAC, com PEC desenvolvido.

Epígino esclerotinizado, projetado ou não sobre o sulco epigástrico. Uma abertura

de copulação (AC) em Corinna (figs. 121, 129, 138, 147, 157), Abapeba (figs. 190,

201, 209), Falconina (figs. 213, 221), Septentrinna (figs. 232, 244), Simonestus (figs.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 27

Figs. 89-92. Corinna C. L. Koch, palpo do macho, expandido. C. nitens (Keyserling): 89, prolateral; C. ducke sp.

nov.: 90, prolateral; C. recurva sp. nov.: 91, retrolateral; C. capito (Lucas): 92, prolateral. Abreviaturas: AER,

área esclerotinizada distal do reservatório; ATR, apófise tibial retrolateral; Ci, Cimbio; C, condutor; E, &mbolo; F,

fundus; HB, hematódoca basal; HM, hematödoca média; P, pecíolo; PCr, processo cimbial basal retrolateral; PTC,

processo tegular de Corinna; PTd, processo tegular dorso-retrolateral; PV, processo ventral da apófise tibial

retrolateral; R, reservatório; ST, subtégulo; T, tégulo; Ti, tíbia. Figs. 89, 92 (barra, 0,5 mm); 90,91 (barras, 0,25

mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

OR BONALDO

Figs. 93-96. Corinninae, palpo do macho, expandido. Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge): 93, prolateral;

94, retrolateral; Paradiestus giganteus (Karsch): 95, prolateral; Simonestus validus (Simon): 96, retrolateral.

Abreviaturas: AER, área esclerotinizada distal do reservatório; ATR, apófise tibial retrolateral; C, condutor; E,

êmbolo; F, fundus; HB, hematódoca basal; HM, hematódoca média; LD, lobo dorsal da apófise tibial retrolateral;

LV, lobo ventral da apófise tibial retrolateral; P, pecíolo; PTd, processo tegular dorso-retrolateral; PTP, processo

tegular de Paradiestus; PTX, processo tegular de Xeropigo; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral; R,

reservatório; ST, subtégulo; T, tégulo. Figs. 93, 94, 96; 95, respectivamente na mesma escala (barras, 0,5 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 29

| Figs. 97-100. Abapeba gen. nov., palpo do macho, expandido. A. lacertosa (Simon): 97, prolateral; 98, retrolateral;

| A. rioclaro sp. nov.: 99, retrolateral; A. grassima (Chickering): 100, retrolateral. Abreviaturas: AER, área

esclerotinizada distal do reservatório; C, condutor; E, êmbolo; HB, hematódoca basal; HM, hematódoca media; P,

| pecíolo; PTd, processo tegular dorso-retrolateral; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral; R, reservatório;

| ST, subtégulo; T, tégulo. Figs. 97, 98; 99: 100, respectivamente na mesma escala (barras, 0,25 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

30 BonaLDO

Figs. 101-105. Corinninae, palpo do macho, expandido. Falconina gracilis (Keyserling): 101, prolateral; Tapixaua

callida sp. nov.: 102, prolateral; 103, retrolateral; Septentrinna steckleri (Simon): 104, prolateral; S. yucatan sp.

nov.: 105, prolateral. Abreviaturas: AER, área esclerotinizada distal do reservatório; C, condutor; E, êmbolo; F,

fundus; HB, hematódoca basal; HM, hematódoca média; LV, lobo ventral da apófise tibial retrolateral; P, pecíolo;

PCr, processo cimbial basal retrolateral; PEF, processo embolar basal de Falconina; PST, processo subtegular de

Tapixaua; PTd, processo tegular dorso-retrolateral; PTF, processo tegular de Falconina; PTS, processo tegular de

Septentrinna; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral; R, reservatório; ST, subtégulo; STd, porção distal

do subtégulo de Tapixaua; STp, porção proximal do subtegulo de Tapixaua; T, tégulo. Todas as figuras na mesma |

escala (barra, 0,25 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 3]

Figs. 106-109. Creugas Thorell, palpo do macho, expandido. C. gulosus Thorell: 106, retrolateral; 107, prolateral;

C. bellator (L. Koch): 108, retrolateral; 109, prolateral. Abreviaturas: C, condutor; DAC, divisão apical do êmbolo

de Creugas; E, êmbolo; F, fundus; HB, hematódoca basal; HM, hematódoca média; LD, lobo dorsal da apófise

tibial retrolateral; LV, lobo ventral da apófise tibial retrolateral; P, pecíolo; PEC, processo embolar mediano de

Creugas; R, reservatório; ST, subtégulo; T, tégulo. Figs. 106, 107 (barra, 0,25 mm); 108, 109 (barra, 0,5 mm),

respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

32 BONALDO

ap “o 5

Figs. 110-113. Corinninae, palpo do macho, expandido. Megalostrata raptrix (L. Koch): 110, prolateral; 111,

retrolateral; Erendira atrox (Caporiacco): 112, prolateral; 113, retrolateral. Abreviaturas: AER, área esclerotinizada |

distal do reservatório; ATR, apófise tibial retrolateral; C, condutor; E, &mbolo; F, fundus; HB, hematódoca basal; |

HM, hematódoca média; P, pecíolo; PTd, processo tegular dorso-retrolateral; PTM, processo tegular de Megalostrata |

e Erendira; R, reservatório; ST, subtégulo. Todas as figuras na mesma escala (barra, 0,5 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... sa

_Figs. 114-118. Corinninae, palpo do macho, expandido. Methesis semirufa (Simon): 114, prolateral; Stethorrhagus

“oxossi Bonaldo & Brescovit: 115, prolateral; Parachemmis fuscus (Chickering): 116, prolateral; 117, retrolateral;

Tupirinna rosae sp. nov.: 118, prolateral. Abreviaturas: AER, área esclerotinizada distal do reservatório; ATR,

apófise tibial retrolateral; ATV, apófise tibial ventral apical; C, condutor; E, &mbolo; F, fundus; HB, hematódoca

basal; HM, hematódoca média; P, pecíolo; PET, processo embolar de Tupirinna; PLP, processo laminar retrolateral

de Parachemmis; PTd, processo tegular dorso-retrolateral; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral; R,

reservatório; ST, subtégulo; T, tégulo. Todas as figuras na mesma escala (barra, 0,25 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

34 BONALDO

255, 259), Tapixaua (fig. 292), Methesis (fig. 300), Tupirinna (figs. 329, 347), no

grupo bellator de Creugas (figs. 277,282) e na maioria das espécies de Stethorrhagus

(BonALDo & Brescovir, 1994, figs. 10f, 12d, 23a). Duas aberturas de copulação em

Xeropigo (figs. 160, 161, 170), Paradiestus (figs. 176, 180), Megalostrata (fig. 308),

Erendira (figs. 316, 322), Parachemmis (figs. 333, 337), no grupo gulosus de Creugas

(figs. 265, 269) e em Attacobius (PLATNICK & BAPTISTA, 1995, figs. 9, 12, 18; BONALDO &

Brescovir, 1997, fig. 15). Em Septentrinna, bolsa epiginal (BES, figs. 232, 244), aberta

posteriormente em relação à abertura de copulação. Vulva geralmente com uma placa

esclerotinizada posterior (PVP, figs. 122, 181, 191, 283, 342), constituída pela

continuação da parede posterior do epígino; em Corinna, bem desenvolvida apenas no |

grupo rubripes, com dobras fenestradas, circundando parcialmente as espermatecas

primárias e ductos de fertilização (figs. 122, 126); em Paradiestus, com um par de

depressões laterais (figs. 177, 181); em Falconina, com extensões fusionadas às

espermatecas primárias (figs. 214, 222); em Erendira, modificada, com um par de

bolsas acessórias, de fundo cego, abertas na parede lateral posterior (BVE, figs. 317,

323); em Tupirinna, PVP de desenvolvimento variável e ducto copulatório amplo.

Espermatecas secundárias (ES, figs. 126, 181) porosas, constituídas por modificação do

ducto copulatório, geralmente mais desenvolvidas do que as primárias; em Falconina

(figs. 214, 222), Septentrinna (figs. 237, 250), grupo gulosus de Creugas (figs. 270,

274), Parachemmis (figs. 334, 338) e Stethorrhagus (BONALDO & BRESCoVIT, 1994, figs.

16e, 19d), espermatecas secundárias reduzidas, menores que as primárias; em Tapixaua

(figs. 293), espermatecas secundárias fusionadas às primárias; em Methesis (fig. 301),

Erendira (figs. 317, 323) e Tupirinna (figs. 343, 347), espermatecas secundárias ausentes.

Espermatecas primárias (EP) globulares (figs. 122, 126, 181,210, 260, 338) reconhecidas

pela inserção do ducto de fertilização. Ductos de fertilização (DF, 126, 181, 196) em

geral curtos, de ápice agudo; no grupo yucatan de Septentrinna, ductos de fertilização

longos, de ápice truncado (figs. 245, 250).

Composição. Dezessete gêneros. Corinna C. L. Koch, Xeropigo O. Pickard-

Cambridge, Paradiestus Mello-Leitão, Falconina Brignoli, Creugas Thorell, Methesis

Simon, Megalostrata Karsch, Stethorrhagus Simon, Parachemmis Chickering,

Attacobius Roewer, Ecitocobius Bonaldo & Brescovit; gêneros novos: Abapeba,

Septentrinna, Simonestus, Tapixaua, Erendira, Tupirinna.

Comentários. Schiapellia, proposto em Clubionidae, Corinninae, por MELLO-LEITAO

(1938), é um Anyphaenidae (M. Ramírez, com. pessoal). Pseudoceto Mello-Leitão,

considerado por PLarnick & Ewin (1995:2) como um possível Corinninae, é um

Miturginae, Miturgidae (A. D. Brescovit, com. pessoal). O gênero Medmassa Simon,

com diversas espécies descritas para a África, Ásia e Oceania (espécie-tipo da Malásia), |

é um provável integrante de Castianeirinae; das cinco espécies neotropicais descritas |

por Simon (1898) e Caroriacco (1947, 1954, 1955), Medmassa andina Simon e M.

venezuelica Caporiacco são transferidas para Corinna e as outras três espécies, M. glabra |

Caporiacco, M. septentrionalis Caporiacco eM. brunneolanceata Caporiacco, são aqui |

consideradas species inquirendae.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

4(3).

8(7).

9(6).

SEE

65).

6).

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 35

| Chave para gêneros de Corinninae

Sérrula dos enditos ausente, palpo do macho com processo tegular (PTA) de

ápice e base livres, inserido medianamente no tégulo (BonaLDO & BRESCOVIT,

KITTS DI ee ee RN 2

Serrula dos enditos presente (figs. 23, 24), palpo do macho sem PTA (figs.

RSCG 253 035 Wr DM itieeltadsästerecdssh 3

Dois olhos, os posteriores e laterais anteriores ausentes; OMA näo-demarcados

internamente; metatarsos com espinho ventro-apical mediano curvo

(Bonseno Sabrescovin MON Ties TI lernen

Be. ee TR Ecitocobius Bonaldo & Brescovit.

Oito olhos, OMA com demarcação interna (BoNALDO & Brescovit, 1997, fig.

14); metatarsos sem espinho ventro-apical mediano curvo; tarsos

sompramidos;lateralmente@t... nes ae Attacobius Roewer.

Carapaça subquadrada, com estreitamento cefälico pouco acentuado (figs. 3,

MEG O) ee Meer Bad 4

Carapaga suboval, com estreitamento cefälico acentuado (figs. 5, 162, 172,

192, 219 220) seen 5

Bordas laterais da regiäo cefälica sub-retas (fig. 251); garra das queliceras

muito curta (fig. 16); espinhos ventrais das tíbias e metatarsos I e II curtos;

palpo do macho com condutor hialino (figs. 253, 257) ........... nun

caio EBEN ad Mp ro ER EEE RRRARARE TE Simonestus gen. NOV.

Bordas laterais da regiäo cefälica sinuosas (figs.136, 137, 143); garra das

queliceras longas (figs. 10, 13); tíbias e metatarsos I e II com espinhos

longos; palpo do macho com condutor esclerotinizado, com uma calha

prolateral onde se encaixa o &mbolo (figs. 153-155) ....................u..00222000.

Abdömen com tubérculo traqueal (figs. 75, 76) ........ss io 6

Abdomen semitubereulortraquealdis: 7A): 2. ae ante ae Morenos 11

Esterno com um par de escavações laterais anteriores (figs. 25, 26); tíbia do

palpo do macho com uma apófise ventral apical (ATV, figs. 115, 116, 118,

DORSO) BRAUNE ER kan 7

Esterno sem escavagöes laterais anteriores; tibia do palpo do macho sem ATV

KESSEL IS, 3A) A... ea ie. lie. 3

Carapaça com três listras longitudinais de coloração contrastante, uma mediana

sobre a linha do sulco torácico e duas laterais ........... Tupirinna gen. nov.

Carapaga com duas listras longitudinais laterais ou sem listras ................... 8

Embolo relativamente curto, de ápice bífido (fig. 115); epígino, em geral, com

uma abertura de copulação; quando duas, em cavidade mediana comum;

ductos copulatórios curtos e retos; placa vulvar posterior presente (BONALDO

f do BRESEOyIT, 1994. figs: Odie; ME Narr ae Stethorrhagus Simon.

Embolo muito longo, de ápice simples (figs. 325, 326, 331, 336); epígino com

duas aberturas de copulação e ductos copulatórios longos e convolutos;

placa vulvar posterior ausente (figs. 333, 334, 337, 338) ........................

PERLA CR RA En sh Parachemmis Chickering.

Clípeo alto, com cerca de dois diâmetros e meio dos OMA (fig. 296); palpo do

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

36 BONALDO

macho sem processos tegulares; condutor direcionado a base do cimbio

(figs. 298, 299); epigino com uma abertura de copulação (fig. 300) .........

ERTL HEN, Sia DL CEE ADÃO UERR A PESO Methesis Simon.

Clípeo baixo, com cerca do diâmetro dos OMA; palpo do macho com um

processo tegular prolateral (PTM) e condutor, quando presente, direcionado

apicalmente (figs. 111, 113, 304, 314); epígino com duas aberturas de

copulação (figs. 308, 316, 322)... oa o 10

10(9). Chilum dividido; quelíceras do macho muito longas, maiores que o

comprimento da carapaça (figs. 302, 303); palpo do macho com reservatório

espiralado, sem condutor (figs. 304, 310); aberturas de copulação medianas

(fig. 308), vulva com espermatecas secundárias, sem bolsas epiginais laterais

(ig: 309) teme çã, ASS GA Ao O AA Megalostrata Karsch.

Chilum inteiro; quelíceras do macho pouco maiores que a metade do

comprimento da carapaça (figs. 312, 318); palpo do macho com reservatório

em “S” transversal, formando uma alça conspícua; condutor presente (figs.

314, 320); aberturas de copulação anteriores (figs. 316, 322); vulva sem

espermatecas secundárias, com bolsas epiginais laterais (figs. 317, 323).

DT o A Erendira gen. nov.

11(5). Cefalotörax, pernas e abdômen cobertos por pêlos modificados, em forma de

clavartfigs: 45-50) 192) RR EEE Abapeba gen. nov.

Cefalotórax, pernas e abdômen sem tais pêlos .............uun.222222nnnneeesennennnnnee 12

12(11). Clipeo muito alto, com cerca de três diâmetros dos OMA; todos os tarsos sem

escópulas; perna I com longos pêlos espatulados no ápice dos fêmures e

nas patelas e tíbias (figs. 51-53, 288) ...........eee Tapixaua gen. nov.

Clípeo com no máximo dois diâmetros dos OMA; escópulas presentes ao menos

nos tarsos I e II (figs. 28, 36); perna I sem pêlos espatulados................. 13

13(12). Queliceras com um sulco longitudinal na face retrolateral ............................

RR DRA NPR REG RR criou boocansaciso Paradiestus Mello-Leitão.

Queliceras sem sulco longitudinal na face retrolateral ..............................- 14

14(13). Palpo do macho com processo tegular subapical, de base pouco esclerotinizada

(PTX); condutor esclerotinizado, com uma calha mediana onde se encaixa

o êmbolo filiforme (figs. 93, 94, 159, 164); epígino com projeção mediana

na borda posterior e duas aberturas de copulação medianas, próximas entre

si(figs 166,70) cesar rose semit dorso Xeropigo O. Pickard-Cambridge.

Palpo do macho sem PTX, condutor hialino, êmbolo não-filiforme (figs. 216,

230, 242, 267, 280), epígino sem projeção mediana, com uma abertura de |

copulação ou, quando com duas, afastadas entre Si ........uu.es2cnneeeseennnen 15

15(14). Palpo do macho com reservatório näo-espiralado, em “S” proximal; êmbolo |

com uma divisão apical (DAC) e/ou um processo mediano (PEC) (figs.

262-264, 267, 280); epígino com duas pequenas aberturas de copulação

posteriores ou uma ampla abertura de copulação anterior, com borda

posterior demarcada (figs. 265, 269, 273, 277, 282) ...... Creugas Thorell.

Palpo do macho com reservatório espiralado, êmbolo espiniforme ou

lameliforme, sem estruturas medianas ou apicais (figs. 211, 216, 230, 242);

epígino com uma abertura de copulação pequena ou, quando ampla, com

borda anterior demarcada (figs. 221, 232, 244, 249)... 16

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 37

16(15). Palpo do macho com processo tegular laminar mediano (PTF), &mbolo

espiniforme com processo basal (PEF) (figs. 101, 211, 212, 216, 228);

epígino com abertura de copulação encoberta por uma dobra da placa

epiginal; bolsa epiginal ausente; placa vulvar posterior com extensões

fusionadas às espermatecas primárias (figs. 213, 214, 221, 222) ..............

RR eo ALA cortada Ae nl EL ado Bi ahh doe sabaio Falconina Brignoli.

Palpo do macho com um processo tegular tubular subapical de ápice bífido

(PTS), êmbolo sem PEF (figs. 230, 234, 239, 242); epígino com abertura

de copulação conspícua, bolsa epiginal (BES) presente; placa vulvar

posterior sem extensões (figs. 232, 233, 244, 245)...

Corinna C. L. Koch

Corinna C. L. Kocn, 1842:17. Espécie-tipo por designação original, Corinna rubripes C. L. Koch, 1842;

PETRUNKEVITCH, 191 1:446; 1928:177;RoEwer, 1954:593; Bonner, 1956:1207;BriGNOLI, 1983:556;PLATNICK,

1993:619: 1997:728. Nome feminino.

Diestus Simon, 1898:199. Especie-tipo por designação original, Diestus kochi Simon, 1898; PETRUNKEVITCH,

1911:480; 1928:177; RoewEr, 1954:601; Bonner, 1956:1464; BricnoLI, 1983:556; PLATNICK, 1993:617;

1997:729. Nome masculino. Syn. nov.

Lausus Simon, 1898:199. Espécie-tipo por designação original, Corinna aenea Simon, 1896; PETRUNKEVITCH,

1911:487; 1928:177; RoEWER, 1954:602; Bonner, 1956:2385; BriGNOLI, 1983:557; PLATNICK, 1993:617;

1997:724. Nome masculino. Syn. nov.

Tranquilinus MELLo-LertAo, 1915:140. Espécie-tipo por designação originale monotipia, Tranguilinus benefaciens

Mello-Leitão, 1915; sinonimizado com Corinna porMELLO-LEITÃO, 1925:445. Nome masculino.

Nota. O material-tipo de Tranquilinus benefaciens Mello-Leitäo não foi encontrado

no MNRJ. Esta espécie é aqui considerada species inquirenda, face a precariedade da

descrição original.

| Diagnose. Carapaça sub-retangular, região cefálica bem diferenciada, com bordas

“laterais sinuosas, infladas e projetadas (figs. 1, 3, 136, 137, 143; BonaLDo, 1996, figs. 1,

2, 13, 14). Palpo do macho com ATR única, com ou sem PV; processo tegular (PTC)

triangular, virguliforme ou digitiforme; condutor esclerotinizado, com margem prolateral

dobrada ventralmente, formando uma calha onde se aloja o êmbolo; êmbolo longo,

filiforme ou achatado (figs. 89-92, 119, 127, 139, 145, 153-155; BonaLpo, 1996, figs. 7,

8, 16, 17). Epígino com uma abertura de copulação, geralmente anterior ao ducto

copulatório (figs. 121, 129, 138, 147, 157).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 2,65-17,6. Carapaça suboval,

pouco mais longa que larga nos grupos rubripes e capito, mais alongada nos grupos

kochi e aenea; praticamente glabra, com poucas cerdas eretas restritas à região cefálica;

geralmente com granulações finas (fig. 143; BonALDo, 1996, figs. 1, 2), exceto em algumas

espécies dos grupos kochi e aenea, com granulações grossas (figs. 1, 3, 136); maior

largura sobre as coxas II, maior altura sobre a inserção do palpo. Região cefálica bem

delimitada, estreitamento pouco acentuado, com laterais sinuosas, arredondadas e

projetadas (figs. 136, 143; Bonato, 1996, figs. 13, 14); margem anterior truncada,

tubérculo interocular conspícuo, especialmente nos grupos kochi e aenea; região torácica

geralmente com rebaixamento abrupto (fig. 1); sulco torácico curto, menor que o

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

38 BonaLDO

comprimento do QOM, geralmente profundo, exceto em espécies do grupo kochi e aenea;

invaginação mediana da margem posterior geralmente presente. Clípeo baixo, com altura

máxima de um diâmetro e meio dos OMA (fig. 137). Fila de olhos anteriores procurva;

fila de olhos posteriores procurva nos grupos rubripes e capito, sub-reta ou procurva no

grupo kochi, sub-reta ou recurva no grupo aenea. QOM subquadrado (fig. 4), largura

anterior pouco maior que a posterior, geralmente pouco mais longo que largo, exceto no

grupo capito, tão longo quanto largo; cômoro ocular lateral conspícuo (fig. 2), ausente

no grupo aenea. Olhos médios circulares, laterais subovais; OMA maiores que os demais,

exceto no grupo aenea, com olhos subiguais em tamanho (fig. 136). Interdistâncias:

OMA-OMA separados por aproximadamente um diâmetro; OMA-OLA por um a dois

diâmetros dos OMA; OMP-OMP por um e meio a dois diâmetros; OMP-OLP por três a

cinco diâmetros dos OMP; OLA-OLP subcontíguos, exceto no grupo aenea, por até um

diâmetro e meio dos OLP. Chilum com pêlos esparsos ou glabro, inteiro e liso nos

grupos rubripes e capito e em €. aenea; inteiro, bituberculado em C. ducke (fig. 9) e em

C. recurva; dividido, liso em C. kochi. Quelíceras volumosas, com cerca da metade do

comprimento da carapaça; fortemente geniculadas, exceto em espécies do grupo kochi;

face frontal granulada; em C. ducke, face retrolateral com grupo de pêlos serrilhados

proximais, de inserções modificadas em série liriforme (figs. 10-12); estrias retrolaterais

geralmente presentes, pouco conspícuas (fig. 13), ausentes em C. ducke (fig. 10); côndilo

basal conspícuo, subtriangular; retromargem do sulco subungueal com 4 a 6 dentes;

garra forte, engrossada na base e relativamente curta nos grupos rubripes e capito;

delgada desde a base e relativamente longa nos grupos kochi e aenea (figs. 10, 13).

Enditos convergentes, promargem côncava, retromargem com escavação conspícua nos

grupos rubripes e capito (fig. 21); escavação retromarginal menos acentuada nos grupos

kochi e aenea; lábio mais longo que largo, com cerca da metade do comprimento dos

enditos (fig. 22). Esterno mais longo que largo; com poucos pêlos inseridos em tubérculos;

rebordo nítido, principalmente no terço anterior; laterais da margem anterior projetadas,

exceto em. recurva; escavações esternais ausentes (BonaLDo 1996, fig. 15).

Pernas longas, geralmente robustas; delgadas em algumas espécies dos grupos

kochi e aenea; com poucos pêlos simples esparsos; perna I de comprimento subigual à

perna IV, comprimento relativo 1423 ou 4123, variável em todos os grupos; coxas [com

poucos pêlos inseridos em tubérculos, pêlos das demais coxas com inserções não-

tuberculadas; tíbia I com 3 a 6 pares de espinhos ventrais; metatarso I com 2 pares de

espinhos ventrais; escópulas densas nos grupos rubripes (fig. 33) e capito, ralas no

grupo kochi, ausentes no grupo aenea; escópulas, quando presentes, em todos os tarsos

e nos terços anterior e mediano dos metatarsos I e II; metatarsos III e IV com tufo de

cerdas ventro-distais denso nos grupos rubripes e capito, inconspícuo nos grupos kochi

e aenea; unhas tarsais com 10 a 13 dentes curtos (fig. 27); tufo de pêlos subungueais

denso nos grupos rubripes e capito; ralo nos grupos kochi e aenea; tricobótrias tarsais

(fig. 57) distribuídas irregularmente sobre o tarso; órgão tarsal (fig. 67) subapical; unha

do tarso do palpo da fêmea pectinada; nos grupos rubripes e capito, trocanteres Te II |

não-recortados, III e IV levemente recortados; nos demais grupos, todos os trocanteres

não-recortados.

Abdômen pouco piloso, com longos pêlos simples esparsos e pêlos plumosos

inconspícuos; em €. ducke, pêlos plumosos com ramificações angulosas; scutum dorsal

nos machos geralmente quadrangular, restrito à metade anterior do abdômen, exceto

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 39

|em C. ducke e C. recurva, cobrindo a maior parte do dorso do abdômen; nas fêmeas,

ausente ou representado por uma marca circular anterior; scutum ventral

| subquadrangular, presente apenas nos machos de C. ducke e C. recurva. Tubérculo

| traqueal ausente na maioria das espécies. Cólulo representado por uma placa pouco

| esclerotinizada coberta por cerdas curtas (fig. 74).

Palpo do macho. Tíbia curta, com cerca de um terço do comprimento do címbio;

| ATR única, forte, PV geralmente ausente (figs. 119, 132, 156), presente apenas no

| grupo capito e em algumas espécies do grupo kochi (figs. 127, 145). Címbio pouco

| modificado, exceto no grupo kochi, alargado, com projeção retrolateral mediana

| acompanhando o ápice do condutor (figs. 127, 132); PCr pouco desenvolvido nos grupos

| kochi e aenea (fig. 91), ausente nos grupos rubripes e capito; PCp presente, pouco

| desenvolvido (fig. 92). Subtégulo inteiro; fundus pequeno, não-alargado, no tégulo;

tégulo ovóide ou globular; PTd de ápice não-dobrado em gancho; PTC triangular, curto,

| amplamente ligado ao tégulo no grupo rubripes, virguliforme, laminar nos grupos kochi

| e aenea, digitiforme, robusto no grupo capito (figs. 89-92). No grupo capito, reservatório

‚com AER exteriorizada sobre área membranosa do tégulo (fig. 92). Condutor

| esclerotinizado, com margem prolateral formando uma calha onde se aloja o êmbolo;

| nos grupos rubripes e capito, não-estendido prolateralmente (figs. 119, 149); nos grupos

| kochi e aenea, com projeção prolateral (figs. 127, 139). Embolo filiforme ou achatado,

fusionado ao tégulo nos grupos rubripes, kochi e aenea (figs. 89-91) e articulado ao

tégulo por uma membrana no grupo capito (fig. 92). Epígino não-projetado sobre o

sulco epigástrico, exceto em C. rubripes (BonaLDO, 1996, figs. 11, 18) e C. nitens (fig.

121); com uma abertura de copulacäo posterior ou mediana nos grupos rubripes e kochi

(figs. 124, 129) e anterior ou mediana nos grupos capito e aenea (figs. 138, 147). No

grupo rubripes, vulva com PVP bem desenvolvida, com dobras fenestradas (figs. 122,

126); no grupo aenea, ausente (fig. 142); nos grupos kochi e capito, pouco desenvolvida,

com pequenas projeções sobre a base das espermatecas primárias (130, 152); espermatecas

secundárias globulares no grupo rubripes e em C. kochi; reniformes nos grupos capito,

aenea e em C. recurva; espermatecas primárias globulares, menores que as secundárias

(figs. 122, 130, 142, 148).

Elenco, 55 espécies neotropicais, das quais 45 anteriormente alocadas no gênero: Corinna aberrans

Franganillo, 1926; C. annulipes (Taczanowski, 1873); C. anomala Schmidt, 1971; CC. benefacia (Mello-Leitão,

1915); C. bicincta Simon, 1896; C. bonneti Caporiacco, 1947; C. botucatensis (Keyserling, 1891); C. bristoweana

Mello-Leitäo, 1926; C. buccosa Simon, 1896; C. bulbosa F. O. Pickard-Cambridge, 1899; C. bulbula F. O.

Pickard-Cambridge, 1899; C. capito (Lucas, 1856) (päg. 51); C. corvina Simon, 1896; C. cruenta (Bertkau,

1880); C. eresiformis Simon, 1896; C. ferox Simon, 1896; C. galeata Simon, 1896; C. granadensis (L. Koch,

1866); C. ignota Mello-Leitäo, 1922; C. inermis (Bertkau, 1880); C. jayuyae Petrunkevitch, 1930; C. loricata

(Bertkau, 1880); C. macra (L. Koch, 1866); C. mexicana (Banks, 1898); C. modesta Banks, 1909; C. napaea

Simon, 1897; C. nitens (Keyserling, 1891) (pág. 41); C. octodentata Franganillo, 1946; C. parva (Keyserling,

1891); C. parvula Bryant, 1942; C. peninsulana Banks, 1898; C. perida Chickering, 1972; C. phalerata Simon,

1896; C. pictipes Banks, 1909; C. plumipes (Bertkau, 1880); C. punicea Simon, 1897; C. rubripes (C. L. Koch,

1842) (pág. 40); C. selysii (Bertkau, 1880); C. spinifera (Keyserling, 1887); C. tatei Gertsch, 1942; C. testacea

(Banks, 1898); C. toussainti Bryant, 1948; C. travassosi Mello-Leitäo, 1939; C. urbanae Soares & Camargo,

1948; C. variegata F. O. Pickard-Cambridge, 1899. Seis espécies são aqui transferidas para Corinna e quatro

espécies novas são descritas:

Corinna aenea Simon, comb. restaur. (pág. 48).

Corinna alticeps (Keyserling), comb. nov. - Brasil.

Hypsinotus alticeps KEYsERLING, 1891 (holötipo BMNH, examinado).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

40 BONALDO

Diestus alticeps; PETRUNKEVITCH, 1911.

Corinna andina (Simon), comb. nov. - Equador.

Medmassa andina Simon, 1898 (holötipo MNHN, examinado).

Corinna colombo sp. nov. (pág. 52).

Corinna ducke sp. nov. (pág. 46).

Corinna grandis (Simon), comb. nov. - Brasil.

Lausus grandis Simon, 1898 (holötipo MNHN, examinado).

Corinna kochi (Simon), comb. nov. (pág. 45).

Corinna mourai sp. nov. (pág. 42).

Corinna recurva sp. nov. (pág. 49).

Corinna venezuelica (Caporiacco), comb. nov. - Venezuela.

Medmassa venezuelica CaroRrIAcCOo, 1955 (holótipo MUCV, examinado).

Comentários. Diestus validus Simon, D. occidentalis Schenkel e D. separatus

Schmidt são aqui transferidas para Simonestus; Diestus altifrons Mello-Leitão é um

sinônimo de Corinna nitens Keyserling; Lausus sicarioides Mello-Leitão é aqui

transferida para Abapeba; Lausus pulchellus Bryant é um Liocranidae; L. properus

Dyal, do Afeganistão, pertence ao grupo de gêneros relacionados com Oedignatha

Thorell. A julgar pelas descrições originais e pelo material do MRAC examinado até o

momento, as espécies africanas incluídas em Corinna não pertencem ao gênero. Ao

menos C. cribata Simon eC. major Berland (tipos MNHN, examinados), são prováveis

representantes do gênero Brachyphaea Simon (Trachelinae); Corinna natalis Pocock

(tipo BMNH, examinado) não pertence à Corinninae.

Gruporubripes

Diagnose. Carapaça com granulações finas, região cefálica alta, rebaixamento

posterior abrupto (BonaLDO, 1996, figs. 1, 2, 13, 14); fila de olhos posteriores procurva.

Palpo do macho com ATR robusta, sem PV; tégulo amplo, ovóide, reservatório de

orientação elipsóide; PTC pouco desenvolvido, triangular; condutor não-estendido

prolateralmente, alojando o terço distal do êmbolo; êmbolo fusionado ao tégulo (figs.

89, 119, 123). Vulva com espermatecas primárias parcialmente encobertas pelas dobras

laterais da PVP (figs. 122, 126) bem desenvolvida.

Corinna rubripes C. L. Koch

(Figs. 21,22)

Corinna rubripes C. L. Koch, 1842:17, pr. 293, fig. 702 (holötipo © ZMB 2134, Bahia, Brasil, Gomez,

examinado); KARscH, 1880:375, est. 12, fig. 1; Simon, 1898:198; PETRUNKEVITCH, 1911:469; 1928:177;

ROEWER, 1954:600; Bonner, 1956:1216; MorıTz & FiscHER, 1988:137; BoNALDo, 1996:80.

Sparassus rubripes; WALCKENAER, 1847:561.

Diagnose. Corinna rubripes relaciona-se comC. nitens (Keyserling) pela presença

de carena no terço distal do êmbolo e pelo epígino com abertura de copulação posterior

em relação ao ducto copulatório. Machos diferem pela ATR de ápice afilado e pela base

do condutor com um processo quadrangular; fêmeas, pela placa epiginal pouco projetada

posteriormente, com abertura de copulação próxima à margem posterior e ducto

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

o eessssssncncncmstmo ZEREHEEHRRERT

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 41

| copulatório visível por transparência (BONALDO, 1996, figs. 16-19).

Descrição. Redescrita por BonaLDO (1996). Enditos e lábio (figs. 21, 22).

Distribuição. Guiana e nordeste brasileiro.

Corinna nitens (Keyserling)

(Figs. 13, 27, 33, 57, 67, 74, 77-82, 89, 119-122, 153)

| Hypsinotus nitens KEyseruing, 1891:57, est. 2, fig. 30 (síntiposS e®, Blumenau, Santa Catarina, Brasil, BMNH

\ 1890.7.1/1244-1245, examinados, aqui designados lectótipod e paralectótipoS).

Corinna nitens; SIMON, 1897a:192; PETRUNKEVITCH, 1911:468; MELLo-LEITAo, 1923a:54; 1927:398; ROEWER,

| 1954:598; Bonner, 1956:1214.

| Diestus altifrons MeLLo-Lerrão, 1945:260 (holótipo &, Pindapoy, Misiones, Argentina, II.1942, Bridarolli, MLP

| 16575, examinado); RoEwER, 1954:602; ARROZPIDE, 1986:17. Syn. nov.

Diagnose. Machos de Corinna nitens diferem dos de C. rubripes pela ATR de

ápice obtuso e pela base do condutor sem processo quadrangular (figs. 119, 120, 153);

fêmeas diferem pela placa epiginal muito projetada posteriormente, com abertura de

copulação afastada da margem posterior e ducto copulatório não-visível por transparência

(fig. 121).

Descrição. Macho (Novo Hamburgo, Rio Grande do Sul). Carapaça e quelíceras

negras, enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados, pernas amarelo-escuras, coxa,

trocânter e fêmur I, castanho-avermelhados; abdômen cinza-escuro, ventre amarelo.

Comprimento total 14,0. Carapaça: comprimento 6,9, largura 5,5, altura 3,6; clípeo, altura 0,65. Olhos:

fila anterior 2,65, posterior 3,05; QOM: comprimento 0,9, largura anterior 1,2, largura posterior 1,15; diâmetros:

OMA 0,45, OLA 0,35, OMP 0,35, OLP 0,32; interdistâncias: OMA-OMA 0,35, OMA-OLA 0,5, OMP-OMP

0,5, OMP-OLP 0,7, OLA-OLP 0,2. Quelíceras: comprimento 4,0; retromargem com 4 dentes iguais, contíguos.

Esterno: comprimento 3,3, largura 2,8. Abdômen: comprimento 6,7, largura 4,7. Pernas: comprimento relativo

1423. 1- fêmur 5,9 / patela 2,6 / tíbia 5,2 / metatarso 4,5 / tarso 2,5 / total 20,7; II - 5,2/2,5/4,4/4,2/2,2/18,5; HI -

4,5/2,1/3,3/3,9/1,7/15,5; IV - 5,7/2,3/4,9/5,3/1,8 /20,0. Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2;

metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia vlr-lr-lr-1r; metatarso v2-2. IN - fêmur d1-1-1; tíbia p1-0,rl-1, v2-

2-0; metatarso p0-1-0, r0-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1,r0-0-1; tíbia rl-1, v2-2; metatarso p0-1-0,r1-1-0, v2-

2-1. Palpo: figs. 119, 120, 153.

Fêmea (Novo Hamburgo, Rio Grande do Sul). Coloração como no macho.

Comprimento total 15,2. Carapaça: comprimento 7,1, largura 5,6, altura 3,8; clípeo, altura 0,65. Olhos:

fila anterior 2,9, posterior 3,35; QOM: comprimento 0,8, largura anterior 1,25, largura posterior 1,2; diâmetros:

OMA 0,55, OLA 0,45, OMP 0,3, OLP 0,35; interdistâncias: OMA-OMA 0,35, OMA-OLA 0,45, OMP-OMP

0,55, OMP-OLP 0,9, OLA-OLP 0,2. Quelíceras: comprimento 4,0; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 3,4, largura 2,8. Abdômen: comprimento 7,0, largura 4,8. Pernas: comprimento relativo 1423. I -

fêmur 6,1 / patela 2,7 / tíbia 5,2 / metatarso 4,4/tarso 2,3 / total 20,7; II- 5,4/2,5/4,4/4,0/2,1/18,4; III- 4,5/2,2/3,3/

3,9/1,6/15,5; IV- 5,9/2,5/5,0/ 5,5/1,7/20,6. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2. II

- fêmur dl-1, p0-0-1: tíbia vIr-1r-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia p1-0, r1-0, v2-2; metatarso

p0-1-0,r1-1-0, v2-2-1. IV- fêmur d1-1-1, r0-0-1; tíbia r]-1, v2-2; metatarso p0-1-0, r1-1-0, v2-2-1. Epígino: figs.

121, 122.

Variação. Comprimento: (10 S) total 10,1-14,2, carapaça 4,9-7,0, fêmur I 4,9-6,1; (109) total 10,3-

17,6, carapaça 5,1-7,6, fêmur 14,7-6,4.

Distribuição. Sudeste e sul do Brasil, Paraguai e norte da Argentina.

Material examinado. BRASIL.2, M. Eidman (SMF); Minas Gerais: 45, 42 (MNRJ); Diamantina (Minas

da Serrinha), 2, j, XII.1944, 2, TI-II.1945, E. Cohn (AMNH); São João del Rey, 2, 14.VII.1965, J. C. Santos

(MZSP 12575); Lavras, s, 2 (MNRJ 13247);9, 25.11.1993, R.L.C. Baptista (CRB 3524); Baependi, 2, IV.1951, E.

Dente (MZSP 12578); Espírito Santo: Santa Leopoldina (Chaves), 2º, 28.VIIL.1942, B. Soares (MZSP 12576);

Ibitirama (Parque Nacional do Caparaó),2, VII.1986, R. L. C. Baptista (CRB 790); Santa Tereza, s, 05.X.1942,

B. Soares (MZSP 12579); Rio de Janeiro: Valença (Açude Concórdia, Serra da Concórdia), s, j, 05.1V.1996,

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

42 BONALDO

Bernils & Ribeiro (MZSP 15552); Petrópolis, 25, (MNRJ 658, 714); 2, j, XIL.1945-TI. 1946, H. Sick (AMNH);

Magé (Inhomirim, Fazenda Mandioca), 2, 13-14.X.1996, R. S. Bérnils (MZSP 15645); Maricä,2,X.1988,R.L.

C. Baptista (CRB 119); (Reserva Biológica da Ponta do Fundão), 25, 22.X.1995, R. S. Bérnils (MZSP 14990);

Ilha Santana, 2, X.1988, R. L. C. Baptista (CRB 880); Rio de Janeiro, a, C. F. Mello-Leitão (MNRJ 903); 9,

Thayer (MCZ); s, X1.1985, 9, 1V.1986, a, V.1988, R. L. C. Baptista (CRB 243, 611, 2343); (Paineiras), 9,

29.1X.1993, N. I. Platnick (AMNH); (Jacarepaguá), s, 19.X.1964, E. Maury (MACN); (Caixa d'água do Camorim),

9, 28.V111.1938, Schubart (MZSP 8537); Ilha Grande, 9, XI1.1985, R. L. €. Baptista (CRB 1107); São Paulo:

Piracicaba, s, III.1991, S. C. de Castro (IBSP 4207); Botucatu, 2, IV.1988, R. L. C. Baptista (CRB 372); Atibaia,

S, V.1984, L. S. Stryjer (IBSP 3806); Ubatuba, s, 20-25.VII.1967, P. Montonchet (MZSP 8527);2, X.1982, D.

Berringer (IBSP 3525); Salesópolis (Estação Biológica Boracéia), 29, 1964, Oliveira (MZSP 3493); 22, 21 1X.1965,

2, 16.VII. 1966, P. Biasi (MZSP 4840, 5128); 2, 15.VIIL.1995, S. A. Casari (MZSP 15722); Ilhabela (Ilha da

Vitória), s, 1965 (MZSP 5500); São Bernardo do Campo (Caminho do mar, 33 Km de São Paulo), 35, 11.1V.1965,

H. Levi & P. Biasi (MCZ); São Paulo, 2, 11.1X.1912, Möbius (SMF); (Serra da Cantareira), as, VII.1944, E.

Dente (MZSP 12577); (Vila Gumercindo), s, 9, 19.V.1964, H. Kato (MZSP 6000); Iporanga, 2, 30.X1.1952,

Schubart (MZSP 7082); Guatapará,9, j, 1.1944, M. Carrera (MZSP 12574); Alto Sena, 22, 1926 (MZSP 11081);

Paraná: Campina Grande do Sul, s, 22, 04.11.1989, R. Pinto-da-Rocha (MHCI); Curitiba, 2, IV.1988, S. R. Bedin

(MHCI); (Boqueirão), s, TV.1989, Friedel (MHCI); Foz do Iguaçu (Refúgio Biológico de Bela Vista),s, 17.11.1991,

A. B. Bonaldo (MCN 20931); Pinhão (Foz do Rio Morro Verde), 2, 19.VII.1992; Wosiacki, Ribeiro & Iung

(MHCI); Cerro Azul, 2, Leonardos (MNRJ 1139); Quatro Barras (Volta Grande), 2, j, 11.1945:9, VII.1945, H.

Hertel (MHCI); (Rio do Meio),2, H. Hertel (MHCI); Rio Negro,s (MNRJ 58029); Rio Grande do Sul: Soledade

(Fazenda Segredo),9, 13.X.1984, C. J. Becker (MCN 12566); São Borja (Garruchos), 2, 10.X11.1975, A. A. Lise

(MCN 3240); Caxias do Sul (Vila Oliva),2, 08.VI[.1978, P. A. Buckup (MCN 8163); Torres, s, 30.1.1979, €.J.

Becker (MCN 8499): (Colônia São Pedro),s, 03.X.1985, F. K. Fleck (MCN 13636); Maquing, s, 05.VIT.1990,

C. J. Mansan (MCN 19920); Arroio do Tigre (Itaúba), 22, 11.1V.1978, A. A. Lise & H. Bischoff (MCN 7878,

7944): 3, 2, 08.1V.1978, H. Bischoff (MCN 7861); 2, 15.1V.1978, A. A. Lise (MCN 7954): Santa Maria, o,

13.1V.1977, D. Link (MCN 6337); (Barragem Satumino de Brito), s, 14.V11.1982, A. A. Lise (MEN 10616);

Novo Hamburgo, 25, 2, 27.1.1979, T. de Lema (MCN 8558); s, 11.V.1979, M. L. Araújo (MCN 8540); São

Leopoldo, 35, 26.1V.1963, C. Hartlieb & T. de Lema (MCN 1190); (Banhado das Freiras),2, X.1973,9,06.X.1974,

C. J. Becker (MCN 27601, 2410);9, 27.V1.1987, L. A. Moura (MCN 16884); Sapucaia do Sul (Parque Zoológico),

9, 21.1V,1993, C. R. Martins (MCN 23485); Canoas,g, 23.1V.1963, A. A. Lise (MCN 565); Triunfo, 2, 02.1V.1977,

T. Arigony (MCN 5655); (Parque COPESUL de Proteção Ambiental), 29, 17.1X.1993, A. B. Bonaldo & A. D.

Brescovit (MCN 23986, 24553); Porto Alegre, s, 07.VIII.1996, D. Pereira (MCN 27687); (Serraria),s, 03.1V.1958,

A. Oliveira (MCTP 3903). PARAGUAI. Puerto Bertoni, a, A. de W. Bertoni (MCZ). ARGENTINA. 29, 25, V.

Chamberlin (AMNH); Misiones: s (MACN); Puerto Iguazú (60 Km de la ciudad, rio Iguazu), 2, 05.11.1951, W.

Patridge (MACN 3478); Dos de Mayo, s, IV.1968, Galiano (MACN); rio Uruguay (Km 30),º, 01.1X.1958, 5, ],

13.X.1960, W. Patridge (MACN); rio Oruga, s, 1.1964, E. Maury (MACN).

Corinna mourai sp. nov.

(Figs. 123-126)

Holótipo 4, Curitiba, Paraná, Brasil, 26.V.1980, A. Yamamoto (MCN 9290).

Etimologia. O nome específico é uma homenagem ao entomólogo Luciano de

Azevedo Moura.

Diagnose. Machos de Corinna mourai diferem dos de €. rubripes e €. nitens pela

ATR com um processo arredondado ventro-basal e pelo condutor de base pouco

esclerotinizada e ápice alargado (figs. 123, 124); fêmeas diferem pela placa epiginal

não-projetada posteriormente, com abertura de copulação mediana e ducto de copulação,

visível por transparência, em “T” invertido (fig. 125).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça e quelíceras castanho-avermelhadas

escuras; enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados, perna I castanho-avermelhada,

pernas II, II e IV amarelas com terço distal dos fêmures e metade distal das tíbias

manchados de castanho; abdômen com dorso cinza-violáceo e ventre amarelo-claro.

Comprimento total 8,6. Carapaça: comprimento 4,2, largura 3,2, altura 2,1: clípeo, altura 0,42. Olhos:

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 43

Figs. 119-126. Corinna nitens (Keyserling): 119, palpo, ventral; 120, palpo retrolateral; 121, epígino, ventral;

122, epígino, dorsal; C. mourai sp. nov.: 123, palpo, ventral; 124, palpo, retrolateral; 125, epígino, ventral; 126,

epígino, dorsal. Abreviaturas: AC, abertura de copulação; ATR, apófise tibial retrolateral; C, condutor; DF, ducto

de fertilização; E, êmbolo; EP, espermatecas primárias; ES, espermatecas secundárias; PTC, processo tegular de

Corinna; PVP, placa vulvar posterior. Figs. 119-122; 123-126, respectivamente na mesma escala (barra, 0,25

mm).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

44 BONALDO

fila anterior 1,68, posterior 1,92; QOM: comprimento 0,62, largura anterior 0,72, largura posterior 0,75; diâmetros:

OMA 0,32, OLA 0,25, OMP 0,23, OLP 0,23; interdistâncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,27, OMP-OMP

0,23, OMP-OLP 0,55, OLA-OLP 0,17. Quelíceras: comprimento 2,15; retromargem com 4 dentes subiguais,

contíguos. Esterno: comprimento 2,2, largura 1,87. Abdômen: comprimento 4,3, largura 2,7. Pernas: comprimento

relativo 1423. I- fêmur 3,5/ patela 1,6/ tíbia 2,9/ metatarso 2,6/tarso 1,5/total 12,1; 11 -3,0/1,5/2,4/2,4/1,4/10,7;

III - 2,6/1,2/1,6/2,1/0,9/8,4; IV - 3,2/1,4/2,7/2,9/1,1/11,3. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2;

metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia vlr-Ir-Ir-1r; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-0-1, r0-0-1; tíbia

r1-1, v2-2-0; metatarso p0-1-0, r0-1-0, v2-1p-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-0-1,r0-0-1; tibiar1-1, vlp-1p; metatarso

r0-1-0, v2-1p-1. Palpo: figs. 123, 124.

Fêmea (parätipo, Curitiba, Paraná). Coloração como no macho, exceto dorso do

abdômen cinza-amarelado.

Comprimento total 11,2. Carapaça: comprimento 5,2, largura 3,9, altura 2,8 clípeo, altura 0,5. Olhos: fila !

anterior 2,1, posterior 2,37; QOM: comprimento 0,7, largura anterior 0,95, largura posterior 0,87; diâmetros:

OMA 0,37, OLA 0,27, OMP 0,27, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,3, OMA-OLA 0,4, OMP-OMP

0,37, OMP-OLP 0,7, OLA-OLP 0,15. Quelíceras: comprimento 3,1; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 2,6, largura 1,1. Abdômen: comprimento 6,2, largura 4,0. Pernas: comprimento relativo 4123. 1-

fêmur 4,1/ patela 1,8/ tíbia 3,3/ metatarso 2,9/ tarso 1,5/ total 13,6; II - 3,5/1,7/2,8/2,7/1,4/12,1; HI - 3,1/1,5/2,0/

2,4/1,0/10,0; IV - 3,8/1,7/3,2/3,8/ 1,2/13,7. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2.

II - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia vIr-1r-1r-1r; metatarso v2-2. II - fêmur dl-1-1; tíbia r0-1, v2-2; metatarso r0-1-0,

v2-1p-1. IV - fêmur d1-1-1, r0-0-1; tíbia rl-1, vlp-1p; metatarso r0-1-0, v2-1p-1. Epigino: figs. 125, 126.

Variação. Comprimento: (106) total 7,6-9,5, carapaça 3,8-4,5, fêmur 1 3,1- 3,9; (109) total 9,7-12,0,

carapaça 4,0-5,4, fêmur I 3,2-4,2.

Distribuição. Sudeste e sul do Brasil.

Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Rio de Janeiro: Teresópolis (950 m. alt.),&, 111.1979, C. W. Myers

(AMNH); São Paulo: Piedade, O, IV.1980, W. J. Brasil (IBSP 3424): Paraná: Curitiba, 2, TV.1942, P< Moure

(MHCI 1796);S,9, IX.1966, E. D. Rosal (MHCI);9, 11.1943, R. Lange (MHCI); (Sítio Jacobi), S, 31.11.1979,

A. Yamamoto (MCN 9449); Teixeira Soares (Rio D' Areia), 29, IX.1944, R. Lange (MHCI 1389, 1390); Santa

Catarina: Rancho Queimado, 29, 08-12.X.1994, A. B. Bonaldo & L. A. Moura (MCZ):9, 13-15.1.1995, L. A.

Moura (AMNH); Rio Grande do Sul: Cambará do Sul (Área de Preservação Ambiental da Celulose Cambará),

&, 11-13.IX.1994, A. B. Bonaldo & L. A. Moura (MCN 25498): &, 19-21 .XI1.1994, A. B. Bonaldo (MCZ);

Arroio do Tigre (Itaúba),2, 15.1V.1978, A. A. Lise (MCN 7950); Pelotas (Passo da Micaela), S, 25.X11.1995, L.

A. Moura (MCN 27321).

Material examinado. BRASIL. São Paulo: Boracéia, 9, j, 1964, Oliveira (MZSP 3528); Paraná: Palmital,

29, X.1948, Gofferje (MHCI); Paranaguá (Ilha do Mel), 25,9, S. Caron (MHCI); Santa Catarina: Nova Teutônia,

S, F. Plaumman (SMF); Rio Grande do Sul: S (MNRJ); Triunfo, Parque Estadual do Delta do Jacuí (Ilha

Cabeçuda), 9, 29.VIL.1999, A. B. Bonaldo (MCN 31413); (Fazenda São José), 2 6, 2 2, 05-07.1.2000, A. B.

Bonaldo (MCN 31789).

Grupo Kochi

Diagnose. Carapaça com granulação e rebaixamento variáveis; fila de olhos

posteriores procurva. ATR com ou sem PV; tégulo globular, ocupando a metade proximal

do alvéolo; reservatório de orientação circular ou subcircular; PTC desenvolvido,

virguliforme, inserido apicalmente em relação à base do condutor; condutor com projeção

prolateral longa, alojando a maior parte do êmbolo; êmbolo fusionado ao tégulo (figs.

90, 127, 128, 132, 133, 154). Epígino com abertura de copulação pequena (figs. 129,

134); vulva com PVP pouco desenvolvida (figs. 130, 135).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 45

Corinna kochi (Simon), comb. nov.

(Figs. 127-131)

Hypsinotus capito; L.KochH, 1866:272, est. 11,fig. 173,non Drassus capito Lucas, 1856 (identificação errônea);

BERTKAU, 1870:109.

Diestus kochi Simon, 1898:193, 199, nomem novum para Hypsinotus capito L. Koch, 1866 (síntipos 3 9, 23,

Santa Fé de Bogotá, Cundinamarca, Colômbia, BMNH 1890.7.1/1231-1235, examinados); PETRUNKEVITCH,

1911:480; RoEwER, 1954:602; Bonner, 1956:1464.

Nota. L. Koch (1866) descreveu fêmeas coletadas em Santa Fé de Bogotá, Colômbia,

que identificou como Hypsinotus capito (Lucas, 1856), espécie posteriormente transferida

para Corinna por Simon (18974). Simon (1898) apontou ter sido errônea a identificação

de L. Koch e propôs, com base no mesmo material, Diestus kochi, espécie-tipo de Diestus.

Assim, as fêmeas descritas por L. Koch tornaram-se a série sintípica de D. kochi Simon,

1898. A sinonímia de Diestus com Corinna, implicaria na homonímia secundária de C.

kochi (Simon, 1898) com C. kochi Petrunkevitch, 1911, espécie descrita por L. KocH

(1866) sob o nome Hypsinotus rubripes (pré-ocupado por Corinna rubripes C. L. Koch,

1842). Entretanto, C. kochi Petrunkevitch, 1911 é aqui transferida para Abapeba gen.

nov. (pág. 67).

Diagnose. Machos de Corinna kochi diferem dos de C. ducke pela ATR com PV;

tégulo deprimido, não-projetado ventralmente; condutor amplo, muito desenvolvido

(figs. 127, 128); fêmeas diferem pelo ducto copulatório muito longo, descrevendo uma

alça anterior à abertura de copulação (figs. 129, 131).

Descrição. Macho (Reserva Biológica Carpanta, Junin). Carapaça, enditos e lábio

castanho-avermelhados escuros; quelíceras negras, esterno castanho-avermelhado, pernas

anteriores castanho-avermelhadas, pernas posteriores amarelas; abdômen cinza-violáceo.

Comprimento total 9,5. Carapaça: comprimento 4,8, largura 3,7, altura 2,1; clípeo, altura 0,35. Olhos:

fila anterior 1,75, posterior 2,02; QOM: comprimento 0,52, largura anterior 0,75, largura posterior 0,8; diâmetros:

OMA 0,3, OLA 0,27, OMP 0,22, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,22, OMA-OLA 0,32, OMP-OMP

0,35, OMP-OLP 0,57, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 2,9: retromargem esquerda com 5 dentes iguais,

subcontíguos, retromargem direita com 4 dentes iguais contíguos. Esterno: comprimento 2,4, largura 2,1. Abdômen:

comprimento 4,7, largura 3,2. Pernas: comprimento relativo 1423. I- fêmur 4,1/patela 1,7/tíbia 3,5/ metatarso

3,0/ tarso 1,7/total 14,0; II - 3,6/1,6/3,1/2,8/1,5/12,6; II - 2,8/1,3/2,0/2,4/1,1/9,6; IV - 3,7/1,6/3,1/3,1/1,2/12,7.

Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1:; tíbia p0-1-0-1-1, vO-2-2-2-2; metatarso p0-1-0, v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1;

tíbia p0-1-0-1, vO-Ir-Ir-Ir-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-0, p0-0-1; tíbia p1-1, r1-1, v2-0-0; metatarso p0-1-

0, r0-1-0, v1r-0-1. IV - fêmur d1-1-0; tíbia r0-1, vlp-O-1p; metatarso p0-0-1, r0-1-0, v2-1p-1. Palpo: figs. 127,

128.

Fêmea (Reserva Biológica Carpanta, Junin). Coloração como no macho.

| Comprimento total 13,5. Carapaça: comprimento 6,0, largura 4,4, altura 2,9; clipeo, altura 0,45. Olhos:

* fila anterior 2,0, posterior 2,4; QOM: comprimento 0,55, largura anterior 0,85, largura posterior 0,89; diâmetros:

_ OMA 0,3, OLA 0,27, OMP 0,27, OLP 0,27: interdistâncias: OMA-OMA 0,3, OMA-OLA 0,4, OMP-OMP 0,37,

OMP-OLP 0,62, OLA-OLP 0,15. Quelíceras: comprimento 3,6; retromargem com 4 dentes subiguais, contiguos.

Esterno: comprimento 2,9, largura 2,5. Abdômen: comprimento 6,8, largura 4,5. Pernas: comprimento relativo

- 1423.1 - fêmur 4,9/ patela 2,1/ tíbia 4,3/ metatarso 3,6/ tarso 2,0/ total 16,9; II - 4,6/2,0/3,7/3,3/1,8/15,4; HI -

3,6/1,7/2,4/3,0/1,5/12,2; IV - 4,5/2,0/3,8/3,9/1,6/15,8. Espinulagäo: I - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia p0-0-1-0-1,

vlp-1p-2-2-2-2: metatarso p0-1-0, v2-1r. II- fêmur d1-1; tíbia p0-1-0-1, vIr-Ir-1r-2; metatarso p0-1-0, v2-2. HI

- fêmur d1-0-0, p0-0-1; tíbia pl-1, rl-1, v1r-0-0; metatarso pO-1-1,r1-1-1, v2-1p-1. IV - fêmur d1-1-0; tíbia rO-

1, v1p-0-1p; metatarso p0-0-1, r0-1-0, v2-1p-1. Epígino: figs. 129-131.

Variação. Comprimento: (36) total 9,5-10,3, carapaça 4,8-5,6, fêmur I 4,1-4,2: (89) total 11,7-13,5,

carapaça 5,3-6,1, fêmur I 4,1-5,1. A alça do ducto copulatório pode estar orientada para a esquerda ou para a

direita (figs. 129, 131).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

46 BONALDO

Distribuicäo. Centro e sudoeste da Colömbia.

Material examinado. COLÖMBIA. Cundinamarca: Santa Fe de Bogotá, 2, (MNRJ 196); (3000 m. alt.)

S, 39, 12-13.1.1964, P. B. Schneble (MCZ); (Sabana, 2600-3000 m. alt.), &, 9, X.1956, Nogel-Mainz (SMF);

(Paramo de Chingaza, 20 Km O. Bogotá, 4º 40º N 73° 47º 0),9, 11.1X.1985, H. Sturm (MCZ). Narino: Junin

(Reserva Biológica Carpanta, NE Parque Nacional Chingaza), 6, 29, 2-3.11.1989, B. & V. Roth (CAS, AMNH).

Corinna ducke sp. nov.

(Figs. 1, 2, 9-12, 23, 58, 73,90, 132-135, 154)

Holótipo 4, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas, Brasil,

27.1.1992, H. Höfer & T. Gasnier (INPA). |

Etimologia. O nome específico é um substantivo em referência à localidade-tipo.

Diagnose. Machos de Corinna ducke diferem dos de C. kochi pela ATR sem PV,

tégulo amplo, muito projetado ventralmente; condutor relativamente pouco desenvolvido

(figs. 132, 133, 154); fêmeas diferem pelo epígino com ducto copulatório compacto,

posterior à abertura de copulação (figs. 134, 135).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça e quelíceras castanho-avermelhadas

escuras; enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados; pernas castanhas, com tarsos e

terço distal das tíbias amarelos; dorso do abdômen cinza, com um par de manchas

brancas medianas, ventre cinza-claro.

Comprimento total 5,8. Carapaça: comprimento 2,7, largura 1,9, altura 1,35; clípeo, altura 0,4. Olhos:

fila anterior 1,02, posterior 1,25; QOM: comprimento 0,5, largura anterior 0,57, largura posterior 0,6; diâmetros:

OMA 0,23, OLA 0,17, OMP 0,2, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP

0,22, OMP-OLP 0,23, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 1,4; retromargem com 6 dentes subiguais,

separados. Esterno: comprimento 1,4, largura 1,15. Abdômen: comprimento 2,7, largura 1,7. Pernas: comprimento

relativo 4123. I - fêmur 2,7/ patela 0,89/ tíbia 2,45/ metatarso 2,4/ tarso 1,65/ total 10,09; II - 2,4/0,85/2,05/2,1/

1,45/8,85; HI - 1,9/0,7/1,6/1,85/1,2/7,25; IV - 2,95/0,85/2,75/3,25/1,65/11,45. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-

0-1; tíbia vlp-1r-1p-2-2-2; metatarso v2-2-2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1; tíbia v0-2-0-2-2: metatarso v 1r-2-0-2.

HI - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-0-1; tíbia p1-0, r1-1, v1p-0-2: metatarso pl-0-1, r1-1-1, vlp-1r-1p-1. IV - fêmur dl-

1-1, pO-1-1, r0-0-1; tíbia p1-0, r1-1, v1p-0-2: metatarso p1-1-1,r1-1-1, vIp-Ir-1p-1. Palpo: figs. 132, 133, 154.

Fêmea (parátipo, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas).

Coloração como no macho, exceto abdômen cinza-violáceo, com par de manchas brancas

dorsais medianas, quadrangulares; ventre com uma grande mancha branca mediana

estendida nas laterais do abdômen.

Comprimento total 7,7. Carapaça: comprimento 3,3, largura 2,5, altura 1,8; clípeo, altura 0,42. Olhos: fila

anterior 1,32, posterior 1,57; QOM: comprimento 0,65, largura anterior 0,7, largura posterior 0,72; diâmetros:

OMA 0,25, OLA 0,2, OMP 0,2, OLP 0,2: interdistâncias: OMA-OMA 0,22, OMA-OLA 0,17, OMP-OMP 0,37,

OMP-OLP 0,37, OLA-OLP 0,12. Quelíceras: comprimento 1,85; retromargem com 5 dentes subiguais, separados.

Esterno: comprimento 1,8, largura 1,4. Abdômen: comprimento 4,0, largura 2,5. Pernas: comprimento relativo |

1423.1- fêmur 3,55/ patela 1,2/ tíbia 3,4/ metatarso 3,15/tarso 2,0/total 13,3. II- 3,1/1,15/2,7/2,65/1,7/11,3; |

III - 2,75/0,95/2,25/2,65/1,5/10,1; IV - 3,6/1,1/3,5/4,25/1,9/14,35. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1: tíbia v2-

2-2-2-2; metatarso v2-2-2-2. Il - fêmur d1-1, p0-1-1; tíbia vlp-1p-2-2-2; metatarso vlp-2-2-2. II - fêmur dl-1-1,

p0-1-1, r0-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-0-1,r1-1-1, v2-1p-1. IV - fêmur dI-1-1, pO-1-1,r0-0-1; |

tíbia p0-1-0, 10-0-1, v1p-0-1p; metatarso p1-0-1,rl-1-1, v2-1p-1. Epígino: figs. 134, 135.

Variação. Comprimento: (10 S) total 5,1-6,3, carapaça 2,4-3,1, fêmur I 2,2-3,2; (109) total 7,2-9,4,

carapaça 3,1-3,8, fêmur 1 3,3-3,9. Alguns machos e fêmeas não apresentam padrão de coloração abdominal definido;

em alguns exemplares a mancha ventral branca é dividida por uma linha cinza-violácea longitudinal mediana; nas

fêmeas, os ductos copulatórios e as espermatecas secundárias podem ser assimetricos.

Distribuição. Amazônia central.

Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Amazonas: Manaus, &, X1I.1978, J. A. Rafael (INPA); (Reserva

Florestal Adolpho Ducke), &, 19.VI1.1991, H. Höfer (SMNK):S, 18.11.1992 (MCN 22257):;9,9, 11.V.1992,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 47

Figs. 127-135. Corinna kochi (Simon): 127, palpo, ventral; 128, palpo, retrolateral; 129, epígino, ventral (Junín,

* Narino); 130, epígino, dorsal; 131, epígino, ventral (Santa Fé de Bogotá, Distrito Especial); C. ducke sp. nov.:

132, palpo, ventral; 133, palpo, retrolateral; 134, epígino, ventral; 135, epígino, dorsal. Abreviatura: PV, processo

ventral da apófise tibial retrolateral. Figs. 127-131 (barra, 0,5 mm); 132-135 (barra, 0,25 mm), respectivamente

na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

48 BONALDO

04.1.1993, H. Höfer & T. Gasnier (SMNK); 39, 14-22.VIIL.1991, 18.1.1994, A. D. Brescovit (MCN 21433,

25078, 28740); (Fazenda Esteio, 60 Km N Manaus), O, 21.V.1985 (INPA); ?, 06.V1.1985 (MCN 19203); 9, 2,

01.X.1985 (MCN 19824, INPA): 6,9, 08.X.1985 (INPA);S, 09.X.1985 (INPA);J', 2, 16.X.1985 (MCN 19752);

9, 13.X1.1985 (MCN 19218); 25, 2, 11.XU.1985 (INPA); &, 18.11.1986 (MCN 19217); S, 05.11.1986 (MEN

19208) (todos coletados por B. C. Klein).

Material examinado. BRASIL. Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke), 2, 17.X1.1973,

L. P. Albuquerque (MCN 19245): 6, 03.1V.1990, J. Vidal (INPA); &, 02.1X.1991, H. Höfer (SMNK);&, 9, 06-

09.VIII.1992, 18.1.1994, A. D. Brescovit (MCN 22276, 25101); 26,9, 30.II, 10.VIHI, 12.X.1992, H. Höfer &

T. Gasnier (INPA): (Fazenda Esteio, 60 Km N Manaus), 2 (INPA): S, 12.1V.1985 (MCN 19819):6, 14.V.1985

(INPA); S, 15.V.1985 (MCN 19781, 19826); &, 23.V.1985 (INPA); S, 9, 25.V1.1985 (INPA); &, 08.X.1985

(MCN 19201); &, 13.X.1985 (INPA); &, 16.X.1985 (MCN 19212); 25, 23.X.1985 (INPA); 25, 12.X1.1985

(INPA);S, 13.X1.1985 (MCN 19226);5, 19.X1.1985 (MCN 19204); 25, 20.X1.1985 (MCN 19202, 19214):6,

9, 28.X1.1985 (INPA, MCN 19205): S, 08.1.1986 (MCN 19211); &, 14.1.1986 (INPA); 26, 04.11.1986 (MEN

19206); 4, 12.111.1986 (MCN 28800); S, 26.11.1986 (MCN 19210); S, 17.X11.1987 (INPA) (todos coletados

por B. C. Klein); Coarí (rio Urucu),S, 12.1X.1992, N. O. Aguiar (UA).

Grupo aenea

Diagnose. Carapaça com granulações grosseiras, região cefálica baixa; fila de

olhos posteriores recurva (figs. 3, 4, 136, 137); espinulação reduzida. ATR sem PV;

tégulo globular, ocupando a metade proximal do alvéolo; PTC virguliforme, inserido

apicalmente em relação à base do condutor; reservatório de orientação subcircular;

condutor alojando o terço distal do êmbolo, com projeção prolateral curta; êmbolo

fusionado ao tégulo (figs. 91, 139, 140, 155, 156). Epígino com abertura de copulação

ampla, parcial ou totalmente coberta por um capuz; ducto copulatório amplo (figs. 138,

141, 157); PVP ausente (fig. 142).

Corinna aenea Simon, comb. restaur.

(Figs.136-138)

Corinna aenea Simon, 1896:417 (holótipo 9, São Paulo de Olivença, Amazonas, Brasil, MNHN 8143, examinado).

Lausus aeneus; SIMON, 1898:194, 199: PETRUNKEVITCH, 191 1:489: RoEweER, 1954:602: Bonner, 1956:2385.

Diagnose. Fêmeas de Corinna aenea diferem das de C. recurva pela abertura de

copulação coberta parcialmente por um capuz em forma de septo longitudinal mediano

(fig. 138).

Descrição. Fêmea (holótipo). Carapaça e quelíceras castanho-avermelhadas

escuras; enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados; pernas amarelas com fêmures

I, I e III castanho-escuros, fêmur IV castanho-escuro com terço proximal amarelo;

abdômen com dorso cinza-violáceo, salpicado de pequenas manchas brancas, um par

de grandes manchas brancas na região mediana; ventre com grande mancha mediana

amarelo-clara estendida nas laterais do abdômen.

Comprimento total 4,85. Carapaça: comprimento 2,0, largura 1,55, altura 0,87; clípeo, altura 0,13. Olhos:

fila anterior 0,95, posterior 1,13; QOM: comprimento 0,2, largura anterior 0,42, largura posterior 0,51; diâmetros:

OMA 0,17, OLA 0,16, OMP 0,15, OLP 0,16; interdistâncias: OMA-OMA 0,11, OMA-OLA 0,13, OMP-OMP

0,23, OMP-OLP 0,22, OLA-OLP 0,12. Quelíceras: comprimento 1,0; retromargem com 5 dentes subiguais,

subcontíguos. Esterno: comprimento 1,07, largura 0,95. Abdômen: comprimento 2,7, largura 1,9. Pernas:

comprimento relativo 1423. I- fêmur 1,62/ patela 0,65/ tíbia 1,5/ metatarso 1,4/tarso 1,87/ total 7,04; II - 1,4/

0,6/1,22/1,22/0,77/5,21; WI - 1,22/0,55/0,92/1,12/0,6/4,41; IV - 1,65/0,6/1,57/1,7/0,82/6,34. Espinulação: I -

fêmur dl-1; tíbia v0-1p-1r-0; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1; tíbia v0-1r-Ir-0; metatarso v2-2. IN - fêmur d1-0-

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 49

1, p0-0-1, r0-0-1; tíbia vlp-1p-2; metatarso v2-1p-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-0-1,r0-0-1: tíbia vlp-1p-2; metatarso

| p0-0-1,10-0-1, vlp-1p-1. Epigino: fig. 138.

Macho desconhecido.

Distribuição. Conhecida apenas da localidade-tipo.

Corinna recurva sp. nov.

(Figs. 3, 4,59,91, 139-142, 155-157)

Holótipo &, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas, Brasil,

22.V1.1992, H. Höfer & T. Gasnier (INPA).

Etimologia. O adjetivo específico, do latim recurvus, faz referência à natureza

| recurva da fila de olhos posteriores, característica do grupo aenea.

Diagnose. Machos de Corinna recurva podem ser reconhecidos pela ATR sem

PV, com uma série de minúsculas carenas na face retrolateral (fig. 156); PTC amplo,

| com o ápice prolateral agudo (figs. 139, 140); fêmeas diferem das de C. aenea pela

| abertura de copulação completamente encoberta por um capuz amplo (fig. 141).

Descrição. Macho (holötipo). Carapaça castanho-avermelhada; quelíceras, enditos

e lábio amarelos; esterno castanho-claro, com bordas castanho-escuras, pernas com

coxas amarelas, fêmures e patelas castanho-escuros, tíbias castanho-escuras com terço

distal amarelo, metatarsos amarelos com terço proximal castanho, tarsos Ie Il castanhos,

| Wlle IV amarelos; abdômen amarelo com manchas violáceas esparsas.

Comprimento total 2,95. Carapaça: comprimento 1,5, largura 1,1, altura 0,75; clípeo, altura 0,18. Olhos:

| fila anterior 0,57, posterior 0,77; QOM: comprimento 0,28, largura anterior 0,32, largura posterior 0,36; diâmetros:

| OMA 0,12, OLA 0,09, OMP 0,1, OLP 0,13; interdistâncias: OMA-OMA 0,06, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

| 0,17, OMP-OLP 0,15, OLA-OLP 0,13. Quelíceras: comprimento 0,67; retromargem com 5 dentes subiguais,

| separados. Esterno: comprimento 0,75, largura 0,67. Abdômen: comprimento 1,22, largura 1,02. Pernas:

comprimento relativo 4123. 1 - fêmur 1,17/ patela 0,47/ tíbia 1,02/ metatarso 0,87/ tarso 0,75/ total 4,28; II -

| 1,05/0,4/0,75/0,75/0,6/3,55; II - 0,9/0,37/0,67/0,77/0,52/3,23; IV - 1,32/0,4/1,05/1,15/0,62/4,54. Espinulação:

| 1- fêmur di-1, p0-0-1. I - fêmur di-1-1. III - fêmur d0-0-1. IV - fêmur d1-0-1-1, p0-0-1, r0-0-1. Palpo: figs. 139,

| 140, 155, 156.

Fêmea (parátipo, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas).

Coloração como no macho.

Comprimento total 3,2. Carapaça: comprimento 1,5, largura 1,1, altura 0,75; clípeo, altura 0,16. Olhos:

fila anterior 0,64, posterior 0,85; QOM: comprimento 0,26, largura anterior 0,36, largura posterior 0,4; diâmetros:

OMA 0,14, OLA 0,11, OMP 0,1, OLP 0,12: interdistâncias: OMA-OMA 0,08, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

| 0,21, OMP-OLP 0,15, OLA-OLP 0,15. Quelíceras: comprimento 0,69; retromargem como no macho. Esterno:

| comprimento 0,72, largura 0,67. Abdômen: comprimento 1,62, largura 1,22. Pernas: comprimento relativo 4123.

| I- fêmur 1,1/ patela 0,42/ tíbia 0,92/ metatarso 0,78/ tarso 0,7/ total 3,92; II - 0,97/0,4/0,7/0,7/0,6/3,37; HI - 0,9/

| 0,37/0,62/0,72/0,53/ 3,14; IV - 1,25/0,42/1,02/1,12/0,72/4,53. Espinulação: I- fêmur dl-1. II - fêmur d1-1. III

| = fêmur d1-0-1. IV - fêmur dl-1-1. Epígino: figs. 141, 142, 157.

| Variação. Comprimento: (45) total 2,65-2,95, carapaça 1,45-1,5, fêmur 1,1-1,17; (89) total 2,7-3,3,

| carapaça 1,4-1,55, fêmur I 1,05-1,15.

Distribuição. Amazônia central.

| Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke), &, 13.X.1982

(SMNK); 2, 20.V1.1991, A. D. Brescovit (MCN 21365); 2, 21.VII.1991 (SMNK); &, 02.X.1991 (INPA); 9,

17.11.1992 (INPA): 2, 23.1.1992 (IBSP 10685):S, 08.V1.1992 (SMNK);?, 20.VII.1992 (INPA); 2, 09.XI1.1992

| (SMNK) (todos coletados por H. Höfer & T. Gasnier); (Fazenda Esteio, Reserva Smithsonian, Km 41),9, 15.V.1985,

| B.C. Klein (MCN 19825):9, 05.11.1986, B. C. Klein (MCN 19229).

| Material examinado. BRASIL. Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke), S, 13.1X.1991,

| Parmmam (SMNK);?, 16.X.1991, H. Höfer & T. Gasnier (SMNK); 2, 07.VIII.1992 (IBSP 10705).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

50 BONALDO

Figs. 136-142. Corinna aenea Simon, fêmea: 136, cefalotórax e abdômen, dorsal; 137, cefalotorax, frontal; 138,

epigino, ventral; C. recurva sp. nov.: 139, palpo, ventral; 140, palpo, retrolateral; 141, epigino, ventral; 142,

epigino, dorsal. Figs. 136, 137 (barra, 0,5 mm), 138, 139-142 (barras, 0,25 mm), respectivamente na mesma

escala.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 5]

Grupo capito

| Diagnose. Carapaça com granulações finas, região cefálica alta; fila de olhos

| posteriores procurva (figs. 143, 144); ATR com PV; tégulo reduzido, oblíquo, reservatório

| de orientação elipsóide; PTC digitiforme, inserido proximalmente em relação à base do

condutor; condutor amplo, de base pouco esclerotinizada, alojando os dois terços distais

| do &mbolo; êmbolo articulado, de base ampla, abruptamente afilado, inserido em uma

| área membranácea do tégulo (figs. 92, 145, 149). Epígino com abertura de copulação

pequena (figs. 147, 151); PVP pouco desenvolvida (figs. 148, 152).

Corinna capito (Lucas)

(Figs. 92, 143-148)

| Drassus capito Lucas, 1856:22, pr. 1, fig. 8 (holótipo9, Rio de Janeiro, Brasil, BMNH, não-encontrado).

Corinna capito; Simon, 1897a:177, fig. 174; PETRUNKEVITCH, 191 1:456; MeLLO-LEITÃO, 1923a:52, 54: CAMARGO,

1950:456, figs. 4a-g: ROEWER, 1954:595; BonnET, 1956:1210.

Nota. A identidade desta espécie foi estabelecida por comparação com os

exemplares identificados por CAMARGO (1950).

Diagnose. Machos de Corinna capito diferem dos de C. colombo pela ATR com

| PV pequeno; PTC pouco desenvolvido (figs. 145, 146); fêmeas diferem pela abertura de

copulação mediana (figs. 147).

Descrição. Macho (Rio Claro, São Paulo). Carapaça, quelíceras, enditos e lábio

castanho-avermelhados escuros, esterno amarelo com bordas castanhas, pernas amarelas,

com tíbia, metatarso e tarso castanhos, abdômen amarelo-claro.

| Comprimento total 11,0. Carapaça: comprimento 5,7, largura 4,8, altura 3,0; clípeo, altura 0,62. Olhos:

fila anterior 2,55, posterior 2,87; QOM: comprimento 0,85, largura anterior 1,12, largura posterior 1,1; diâmetros:

OMA 0,42, OLA 0,32, OMP 0,3, OLP 0,3; interdistäncias: OMA-OMA 0,32, OMA-OLA 0,5, OMP-OMP 0,45,

OMP-OLP 0,85, OLA-OLP 0,25. Quelíceras: comprimento 3,5; retromargem com 5 dentes subiguais contíguos.

Esterno: comprimento 2,9, largura 2,4. Abdômen: comprimento 5,2, largura 4,2. Pernas: comprimento relativo

1423 . I - fêmur 5,1/ patela 2,3/ tíbia 4,2/ metatarso 3,8/ tarso 2,0/ total 17,4; II - 4,7/2,2/3,6/3,5/1,7/15,7; HI -

3,9/2,0/2,6/3,2/1,3/13,0; IV - 4,7/2,1/4,0/4,4/1,5/16,7. Espinulação: I- fêmur d1-0, p0-0-1; tíbia v0-2-2-0;

metatarso v2-2. II - fêmur d1-0, p0-0-1; tíbia v0-1r-1r-0; metatarso v2-2. HI - fêmur d1-0-1; tíbia pl-0,r1-1, v2-

2-0; metatarso p1-0-0, r1-0-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-0-1, r0-0-1; tibia rl-1, v1p-1p-0; metatarso p0-1-0, r0-1-0,

v2-2-1. Palpo: figs. 145, 146.

Fêmea (Rio Claro, São Paulo). Coloração como no macho.

Comprimento total 9,9. Carapaça: comprimento 5,0, largura 4,3, altura 2,9: clípeo, altura 0,55. Olhos:

fila anterior 2,25, posterior 2,62; QOM: comprimento 0,72, largura anterior 1,02, largura posterior 1,0; diâmetros:

OMA 0,4, OLA 0,32, OMP 0,27, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,32, OMA-OLA 0,42, OMP-OMP

0,45, OMP-OLP 0,72, OLA-OLP 0,15. Quelíceras: comprimento 3,0; retromargem com 4 dentes subiguais

contíguos. Esterno: comprimento 2,65, largura 2,25. Abdômen: comprimento 4,7, largura 3,9. Pernas: comprimento

relativo 1423. 1 - fêmur 4,2/ patela 2,0/ tíbia 3,5/ metatarso 3,1/tarso 1,8/total 14,6; II - 3,9/1,8/2,9/2,9/1,5/13,0;

II - 3,2/1,6/2,1/2,7/1,1/10,7; IV - 4,1/1,8/3,5/3,8/1,3/14,5. Espinulação: I - fêmur d1-0, p0-0-1; tíbia v0-2-2-0;

metatarso v2-2. II - fêmur d1-0, p0-0-1; tíbia v0-1r-1r-0; metatarso v2-2. III - fêmur d1-0-1, r0-1-0; tíbia p1-0,

r1-1, v2-2-0; metatarso p0-1-0, r0-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-0-1, r0-0-1; tíbia rl-1, vlp-1p-0; metatarso p0-1-0,

r1-1-0, v2-2-1. Epígino: figs. 147, 148.

Variação. Comprimento: (106) total 8,3-12,4, carapaça 4,2-6,2, fêmur I 3,9-5,1; (79) total 7,8-11,3,

carapaça 4,2-6,1, fêmur I 3,4-5,4.

Distribuição. Centro-oeste e sudeste do Brasil.

Material examinado. BRASIL. Goiás: Corumbá de Goiás, S, 26.V.1942, F. Lane (MZSP 12623); Espírito

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

52 BoNALDO

Santo: Santa Leopoldina (Chaves),9, 28.1X. 1942, B. Soares (MZSP 12622): São Paulo: Nova Europa (Fazenda

Itaquerê),S, VI.1965, K. Lenko (MZSP 4560); Pirassununga, O, 22.V.1944, Schubart (MZSP 6435); Rio Claro,

S,9, IV.1941, Pº Pereira (MZSP 12573); Vinhedo, 25, V1.1983, D. T. Rodrigues (IBSP 4717); Rodovia Castelo

Branco (Km 58),5, 05.1.1989, A.C. Mascitelli (MZSP 12571); Baruerí,92, 14.VII.1954, K. Lenko (MZSP 5963);

9, 06.VI. 1954, K. Lenko (MZSP 5525):6,9, TV.1964, K. Lenko (MZSP 3795); São Paulo,9, 11.1956, R.B.Souto

(IBSP 1264); 60, 19.1V.1969, A. Barroso (MZSP 12572);S, VIL.1998, S. M. Kigushi (IBSP 20462); (Perdizes)

S,9,11.1950, H. Urban (MZSP 1414):6, V1.1950, H. Urban (MZSP 1415); 36, 28.1V.1951, H. Urban (MZSP

9737); Embú das Artes, 26, 24.V1.1998, D. R. de Freitas (IBSP 20441, 20443).

Corinna colombo sp. nov.

(Figs. 149-152)

Holótipo 3, Colombo, Paraná, Brasil, 18.V.1987, Equipe Profaupar (MCN 20581).

Etimologia. O substantivo específico, em aposição, refere-se à localidade-tipo.

Diagnose. Machos de Corinna colombo diferem dos de C. capito pela ATR com

PV grande e PTC desenvolvido (figs. 149, 150); fêmeas diferem pela abertura de

copulação anterior (fig. 151).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça e quelíceras negras, enditos e lábio mais

claros; esterno castanho-avermelhado, com bordas castanho-escuras; pernas anteriores

castanho-avermelhadas claras, pernas posteriores amarelas com tarsos, metatarsos e

terço apical da tíbias castanho-avermelhados claros; abdômen cinza-violáceo.

Comprimento total 12,6. Carapaça: comprimento 6,1, largura 5,6, altura 3,2; clípeo, altura 0,6. Olhos: fila

anterior 2,9, posterior 3,34; QOM: comprimento 0,95, largura anterior 1,15, largura posterior 1,2; diâmetros:

OMA 0,45, OLA 0,35, OMP 0,35, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,35, OMA-OLA 0,55, OMP-OMP

0,45, OMP-OLP 0,95, OLA-OLP 0,35. Quelíceras: comprimento 4,0; retromargem com 5 dentes iguais, contiguos.

Esterno: comprimento 3,4, largura 2,9. Abdômen: comprimento 6,6, largura 4,7. Pernas: comprimento relativo

1423. I - fêmur 5,9/ patela 2,7/ tíbia 5,0/ metatarso 4,5/ tarso 2,2/ total 20,3; II - 5,2/2,5/4,3/4,3/2,0/18,3; HI -

4,2/2,2/3,0/3,7/1,5/14,6; IV - 5,3/2,3/4,4/5,2/1,7/18,9. Espinulagäo: I - fêmur d1-0-0, p0-0-1; tíbia vO-Ip-1p;

metatarso v2-1p-1r. II - fêmur d1-0-0; metatarso v2-1p-Ir. HI - tíbia p1-0 vlr-1r-0; metatarso p0-1-0, r0-1-0, v2-

2-1. IV - fêmur d1-0-0; tíbia vO-1r-0; metatarso r0-1-0, v2-2-1. Palpo: figs. 149, 150.

Fêmea (parätipo, Curitiba, Paraná). Coloração como no macho.

Comprimento total 14,6. Carapaça: comprimento 6,0, largura 4,8, altura 3,1; clípeo, altura 0,55. Olhos:

fila anterior 2,7, posterior 3,05; QOM: comprimento 0,8, largura anterior 1,0, largura posterior 1,0; diâmetros:

OMA 0,35, OLA 0,25, OMP 0,25, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,35, OMA-OLA 0,6, OMP-OMP

0,5, OMP-OLP 0,95, OLA-OLP 0,25. Quelíceras: comprimento 3,7; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 2,9, largura 2,6. Abdômen: comprimento 7,4, largura 5,8. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 -

fêmur 4,5/ patela 2,1/tíbia 3,9/ metatarso 3,4/ tarso 1,8/ total 15,7; II - 4,2/2,0/3,3/3,2/1,7/14,4; HI - 3,4/1,9/2,5/

3,5/1,3/12,6; IV - 4,3/2,0/3,7/4,4/1,5/15,9. Espinulação: I- fêmur d1-0-0, p0-0-1; tíbia v0-1p-2: metatarso v2-

2. II - fêmur d1-0-0; tíbia vlp-1p-0; metatarso v2-2. III - tíbia p1-0, r1-0, v1p-2-0; metatarso p0-1-0, r0-1-0, v2-

2-1. IV - fêmur d1-1-0; tíbia, vlp-1p-0; metatarso r0-1-0, v2-2-1. Epigino: figs. 151, 152.

Variação. Comprimento: (86) total 10,5-13,1, carapaça 5,4-6,8, fêmur 1 4,6-6,1: (109) total 9,7-16,3,

carapaça 4,2-6,7, fêmur I 3,5-5,4.

Distribuição. Centro-oeste, sudeste e sul do Brasil (com um registro isolado no

estado do Pará) e norte da Argentina.

Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Mato Grosso do Sul: Iguatemi, 2, 17.11.1981, A. M. Geahl (MEN

12255); São Paulo: Laranjeiras, 9, III.1947, Justus (MZSP 12628); Pinhal,9, 1.1949, A. Maller (AMNH); Igaratá,

2, V.1982, R. P. Moraes (IBSP 3296); Paraná: Jundiaí do Sul, &, 04.V.1987, Equipe Profaupar (MCN 20560);

Telemaco Borba, &, 09.11.1987, Equipe Profaupar (MHCI); S, 16.11.1987, Equipe Profaupar (MCN 20582);

Curitiba, 9, 30.VI.1980, A. Yamamoto (MCN 9287); Pinhão (Foz do Rio Capoteiro), 2, 22.VI1.1992, Munhós-

Matias (MHCI); Santa Catarina: Lagoa do Norte, S, 12.1V.1937, E. Colodal (IBSP 369); Nova Teutônia, 9, F.

Plaumann (SMF); Rancho Queimado, 2, 08-12.X.1994, Bonaldo & Moura (AMNH);?, 13-15.1.1995, Bonaldo

& Moura (MCZ). ARGENTINA. Misiones: &, 9, 11-21 .1V.1989, Projeto Garabí (MCTP 513); Parque Nacional

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 53

Figs. 143-152. Corinna capito (Lucas): 143, fêmea, cefalotórax, dorsal; 144, fêmea, cefalotórax, lateral; 145,

palpo, ventral; 146, palpo, retrolateral; 147, epígino, ventral; 148, epígino, dorsal; C. colombo sp. nov.: 149,

palpo, ventral; 150, palpo, retrolateral; 151, epígino, ventral; 152, epígino, dorsal. Abreviatura: PTC, processo

tegular de Corinna. Figs. 143, 144 (barra, 1 mm); 145-152 (barra, 0,5 mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

54 BoNALDO

Iguazu,®, j, VI. 1985, P. Goloboff (MACN); San Javier, 2, 11-21.1V.1989, Projeto Garabí (MCTP 512).

Material examinado. BRASIL. Pará: 2, C. F. Baker (MCZ); Paraná: Ponta Grossa, &, 01.VI.1990, F.

Jung (MCN 22546); Guarapuava, S, 09.11.1987, Equipe Profaupar (MCN 20585); Teixeira Soares (Rio D' Areia),

2, IX.1944, R. Lange (MHCI 1380); Santa Catarina: Concórdia,9, 12.VI1.1988, F.L. Franco & E. Pagini (MCN

17784); Rio Grande do Sul: Carazinho,9, 28.11.1973, T. de Lema (MCN 0994): São Borja, 2, 11-21.TV.1985,

Projeto Garabi (MCTP 0515); Canela, 29, 20.XII.1966, A. A. Lise (MCN 0961). ARGENTINA. 22 (MACN);

Misiones: 29, 21-30.V1.1989, Projeto Garabi (MCTP 0514).

Xeropigo O. Pickard-Cambridge

Xeropigo O. PickarD-CAMBRIDGE, 1882:423 (espécie-tipo por monotipia, Olios tridentiger O. Pickard-Cambridge,

1869); sinomizado com Corinna porSimon, 1898:199; Bonner, 1958:4843; revalidado por Benorr, 1977:64;

PLATNICK, 1993:622: 1997:725.

Diagnose. Palpo do macho com ATR bilobada; lobo ventral com PV apical e uma

área mediana pouco esclerotinizada; condutor esclerotinizado, com margens prolateral

e retrolateral projetadas, formando uma calha mediana; êmbolo filiforme de inserção

prolátero-apical; processo tegular (PTX) de base pouco esclerotinizada, sobreposto ao

êmbolo e ao condutor (figs. 93, 94, 158, 159, 164, 168). Epígino com duas minúsculas

aberturas de copulação medianas e uma projeção mediana na borda posterior (figs. 160,

161, 166, 170).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 9,2-15,1. Carapaça suboval,

pouco mais longa que larga, superfície não-granulada, densamente coberta por pêlos

plumosos e cerdas eretas esparsas; maior largura entre as coxas II e III, maior altura

sobre a inserção palpal. Região cefálica pouco delimitada, estreitamento pouco acentuado;

margem anterior reta, tubérculo interocular ausente (fig. 162); carapaça baixa, região

torácica gradualmente rebaixada (fig. 163); sulco torácico longo e profundo, de

comprimento similar ao do QOM; invaginação mediana da margem posterior suave ou

ausente. Clípeo baixo, pouco maior que o diâmetro dos OMA. Fila de olhos anteriores

levemente procurva; fila de olhos posteriores procurva ou levemente procurva; QOM

nitidamente mais longo que largo, largura anterior igual ou pouco maior que a largura

posterior; cômoro ocular lateral ausente. Olhos médios circulares, laterais ovais; OMA

pouco maiores que os demais. Interdistâncias: OMA-OMA por cerca da metade de um

diâmetro; OMA-OLA por menos da metade do diâmetro dos OMA; OMP-OMP por

pouco mais de um diâmetro; OMP-OLP por pouco mais de um diâmetro dos OMP;

OLA-OLP por metade do diâmetro dos OLP. Chilum dividido, com poucos pêlos longos.

Quelíceras robustas, pouco menores que a metade do comprimento da carapaça; levemente

geniculadas; face frontal não-granulada; retrolateral com estrias transversais conspícuas;

côndilo basal subtriangular; retromargem do sulco subungueal com 4 dentes separados,

subiguais em tamanho; garra com cerca de um terço do comprimento da quelícera, de

base engrossada (fig. 14). Enditos convergentes, promargem côncava, escavação

retromarginal conspícua; lábio quase tão largo quanto longo, com cerca da metade do

comprimento dos enditos. Esterno pouco mais longo que largo; hirsuto, pêlos não-

inseridos em tubérculos; rebordo nítido; laterais da margem anterior pouco projetadas;

escavações esternais ausentes.

Pernas longas e robustas, com densa cobertura de pêlos plumosos (fig. 39) e

cerdas eretas; comprimento relativo 4123; pêlos das coxas não-inseridos em tubérculos;

tíbia I com 4 a 5 pares de espinhos ventrais e um espinho ímpar proximal; metatarso I

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 55

Figs. 153-161. Corinninae, palpo do macho e epígino. Corinna nitens (Keyserling): 153, ápice do bulbo, ventral;

C. ducke sp. nov.: 154, ápice do bulbo, ventral; C. recurva sp. nov.: 155, ápice do bulbo, ventral; 156, apófise

tibial retrolateral, ventro-retrolateral; 157, epígino, ventral; Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge): 158,

apófise tibial retrolateral, retrolateral; 159, ápice do bulbo, ventral; 160, 161, epígino, ventral. Abreviaturas: C,

condutor; LD, lobo dorsal da apófise tibial retrolateral; LV, lobo ventral da apófise tibial retrolateral; PTC, processo

tegular de Corinna; PTX, processo tegular de Xeropigo; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

56 BonaLDO

com 2 pares de espinhos ventrais; escópulas presentes nos metatarsos I e II, desde o

terço proximal, e nos tarsos I e II; tarsos III e IV com cerdas espiniformes ventrais;

metatarsos III e IV com tufo de cerdas ventro-distais denso; unhas tarsais com 10 a 13

dentes curtos; tufo de pêlos subungueais denso, com pêlos curtos; tricobótrias tarsais

(fig. 60) distribuídas em duas filas dorsais; órgão tarsal (fig. 68) subapical; unha do

tarso do palpo da fêmea pectinada, com vários dentes pequenos; trocanteres I e II não-

recortados, III e IV levemente recortados.

Abdômen densamente coberto por pêlos plumosos, com muitas cerdas eretas longas;

machos e fêmeas sem scutum; tubérculo traqueal ausente. Cólulo representado por uma

placa triangular hirsuta.

Palpo do macho. Tíbia relativamente longa, com cerca da metade do comprimento

do címbio; ATR bilobada, PV presente, apical; lobo ventral com uma área mediana pouco

esclerotinizada; lobo dorsal provido de apófises; címbio com PCr pouco pronunciado e

sem PCp (figs. 158, 164, 169); subtégulo inteiro; fundus não-alargado, no tégulo; PTd de

ápice dobrado em gancho (figs. 93, 94); reservatório mais espiralado em X. smedigari

(fig. 168) do que em X. tridentiger (fig. 164); PTX subapical, de base pouco esclerotinizada

e ápice curvado retrolateralmente, sobreposto ao êmbolo e ao condutor; condutor

parcialmente esclerotinizado, de base membranácea e margens apicais projetadas, formando

uma calha mediana; êmbolo filiforme, fusionado ao tégulo, posicionado entre o condutor

e o PTX no bulbo não-expandido (figs. 159, 164, 168). Epígino com um septo transversal

na borda posterior, projetado sobre o sulco epigástrico em X. tridentiger; não-projetado

sobre o sulco epigástrico em X. smedigari; com duas minúsculas aberturas de fecundação

medianas (figs. 160, 161, 166, 170). Vulva com PVP bem desenvolvida, restrita à metade

posterior da vulva; espermatecas secundárias globulares, espermatecas primárias menores

que as espermatecas secundárias (figs. 167, 171).

Elenco. Duas espécies:

Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge) (pás. 56).

Xeropigo smedigari (Caporiacco), comb. nov. (pág. 58).

Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge)

(Figs. 14, 39, 60, 68, 93, 94, 158-161, 162-167)

Olios tridentiger O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1869:538, pr. 13, fig. 6 (holótipoS, Ilha de Santa Helena, T. J. Melliss,

BMNH, não-encontrado, provavelmente perdido).

Heteropoda tridentigera; O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1873:211.

Xeropigo tridentiger; O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1882:424, pr. 29, figs. 1a-f;BEnoit, 1977:64, figs. 23, 24a-c, 25a-

c; PLATNICK, 1993:622.

Hypsinotus humilis KEysERLING, 1887:446, pr. 6, figs. 18a-c (síntipos O, 9, Ilha de Saint Kitt, MCZ, não-

examinado).Syn. nov.

Xeropigo scutulatus Simon, 1888:209 (sintipos &,2, Ilha de Guadalupe, MNHN, não-encontrados, provavelmente

perdidos).Syn. nov.

Hypsinotus flavipes KEYSERLING, 1891:54, pr. 2, fig. 27 (holótipo &, Espírito Santo, Brasil, BMNH 1890.7.1/

1252, examinado). Syn. nov.

Corinna tomentosa Simon, 1897b:886 (sintipos C', 6 j, BMNH 1894.9.18/124-129: 2, MNHN 18976, Ilha de

Saint Vincent, examinados); PETRUNKEVITCH, 1911:470;RoEWER, 1954:600; Bonner, 1956:1217.Syn. nov.

Corinna tridentiger; Simon, 1898:196 (lapsus).

Corinna humilis; Simon, 1898:197;PETRUNKEVITCH, 191 1:466; 1930:95, figs. 78, 79;ROEWER, 1954:597:BONNET,

1956:1212.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 57

| Corinna scutulata; Simon, 1898:199: PETRUNKEVITCH, 191 1:469: RoEwER, 1954:600: BonnET, 1956:1216.

Corinna flavipes; PETRUNKEVITCH, 191] 1:466;MELLO-LeITÃO, 1923a:53; RoEWER, 1954:596; Bonner, 1956:1211.

| Corinna tridentina Merto-LerrÃo, 1937:315, fig. 5 (holótipo 2, Araguarí, Minas Gerais, Brasil, IBSP 292,

| examinado);ROEWER, 1954:600; Bonner, 1956:1217.Syn. nov.

| Corinna tridentigera; ROEwER, 1954:593; Bonner, 1956:1217.

Nota. Esta espécie foi reconhecida através da redescrição de Benorr (1977) e do

| exame de material proveniente da localidade-tipo. Dos cinco nomes aqui considerados

sinônimos de X. tridentiger, não foi examinado o material-tipo de Hypsinotus humilis e

| Xeropigo scutulatus. Estas sinonímias foram baseadas no extenso material examinado,

| nas descrições originais e, no caso de A. humilis, na redescrição de PETRUNKEVITCH

| (1930).

| Diagnose. Machos de Xeropigo tridentiger diferem dos de X. smedigari pelo lobo

dorsal da ATR trífido; PTX com uma projeção espiniforme na base; reservatório pouco

espiralado, com apenas uma volta proximal (figs. 158, 159, 164, 165); fêmeas diferem

| pelo epigino com uma depressão mediana anterior e septo transversal da borda posterior

| muito desenvolvido e projetado além do sulco epigástrico (figs. 160, 166).

Descrição. Macho (Rio de Janeiro, Rio de Janeiro). Carapaça e quelíceras castanho-

avermelhadas escuras, enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados, pernas amarelas,

| dorso do abdômen cinza-escuro, com uma faixa mediana longitudinal amarelo-clara

| provida, na região posterior, de ramificações laterais direcionadas posteriormente; ventre

| amarelo-claro.

Comprimento total 11,0. Carapaça: comprimento 5,9, largura 4,8, altura 1,87; clípeo, altura 0,5. Olhos:

| filaanterior 1,53, posterior 1,8; QOM: comprimento 0,72, largura anterior 0,85, largura posterior 0,78; diâmetros:

OMA 0,32, OLA 0,27, OMP 0,25, OLP 0,27; interdistâncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

| 0,3, OMP-OLP 0,37, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 2,7; retromargem com 4 dentes subiguais, separados.

| Esterno: comprimento 2,95, largura 2,7. Abdömen: comprimento 5,1, largura 3,4. Pernas: comprimento relativo

4123. 1 - fêmur 5,5/ patela 2,5/ tíbia 5,2/ metatarso 4,7/tarso 2,8/ total 20,7; II - 5,2/2,4/4,6/4,6/2,6/19,4; III -

5,0/2,2/4,0/4,9/2,2/18,3; IV - 6,1/2,3/5,2/6,9/2,3/22,8. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1: tíbia vlp-2-2-2-2;

metatarso v2-2. II - fêmur di-1-1, p0-1-1-1; tíbia vlr-1p-2-2-0:; metatarso v2-2. HI - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1, r0-

1-1-1; tíbia p1-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-2. IV- fêmur dl-1-1, p0-1-0-1,10-0-1-1; tíbia pl-

1,rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1, rl-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 158, 159, 164, 165.

Fêmea (Rio de Janeiro, Rio de Janeiro). Coloração como no macho.

Comprimento total 13,1. Carapaça: comprimento 6,1, largura 5,1, altura 2,25; clípeo, altura 0,47. Olhos:

fila anterior 1,57, posterior 1,85; QOM: comprimento 0,77, largura anterior 0,87, largura posterior 0,85; diâmetros:

OMA 0,37, OLA 0,32, OMP 0,23, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,15, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP

0,37, OMP-OLP 0,42, OLA-OLP 0,12. Quelíceras: comprimento 2,6; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 3,05, largura 2,8. Abdômen: comprimento 7,2, largura 4,1. Pernas: comprimento relativo 4123. -

fêmur 5,6/ patela 2,6/tíbia 5,0/ metatarso 4,4/ tarso 2,6/ total 20,2; II - 5,3/2,5/4,4/4,2/2,4/18,8; HI - 4,9/2,2/3,9/

4,8/2,1/17,9; IV - 6,1/2,3/5,0/6,6/2,3/22,3. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia vl1p-2-2-2-2; metatarso

v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1; tíbia vlp-1r-2-2-2: metatarso v2-2. II - fêmur dl-1-1, p0-1-1-1,r0-1-1; tíbia

pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso p2-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-2-0-1,r0-0-1; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2;

metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 160, 161, 166, 167.

Variação. Comprimento: (105) total 9,2-14,9, carapaça 4,9-6,7, fêmur I 4,7-6,5; (109) total 10,2-15,1,

carapaça 4,9-7,3, fêmur 1 4,8-6,1. Alguns espécimes não apresentam o padrão de colorido do dorso do abdômen;

no epígino, variam a profundidade da depressão anterior e o tamanho da projeção da borda posterior.

Distribuição. Ilha de Santa Helena; Flórida e América Central; noroeste da América

do Sul; nordeste, centro-oeste, sudeste e sul do Brasil.

Material examinado. ILHA DE SANTA HELENA. Rupert's Valley, 2, 30.X11.1965 (MRAC 129411);9,

7), 10.1.1966 (MRAC 129369); The Briar's,9, 26.XI1.1965 (MRAC 129163); Prosperous Bay, 90, 109, 3 j, 02,

22, 24, 26.X11.1965 (MRAC 129272, 129426, 129490, 129527, 129552); Horse Point Plain, 2 9, 30.X1.1965

(MRAC 129155); 2, j, 04.1.1966 (MRAC 129336); Basse Fisher’s Valley, 2, 20.XII.1965 (MRAC 129474)

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

58 BoNALDO

(todos coletados por P. Basilewsky, P. Benoit & N. Leleup). ILHAS BERMUDAS. Bermuda Biologie Station, 29,

02.11.1933, Osborn (AMNH). ESTADOS UNIDOS. Flórida: Florida Bay (Key Largo), 2, 27.11.1957, H. V.

Weems Jr. (AMNH); (Low Key), 9, 02.1.1941, R. P. Allen (AMNH). BAHAMAS. 9, V1.1935 (MCZ); Bimini

(North Bimini), &, 2, V.1941, W.J. Gertsch & M. A. Cazier (AMNH); (South Bimini), 30), j, V, VL1951, W.J.

Gertsch & M. A. Cazier (AMNH). CUBA. 9, 06.XI1.1916 (AMNH); JAMAICA. St. James: Montego Bay, 2,

HI.1912 (AMNH); Morant Cays,9, VI.1965, T. H. G. Aitken (AMNH). HAITI. Grand Riviere,S, 1.1913, W.M.

Mann (MCZ); Port-au-Prince,S, 09.VIII.1958, Lazell (AMNH). PUERTO RICO. Humacao: Ceiba,?, VI.1942

(MCZ); Mayagüez: É, 15-16.11.1914 (AMNH). ILHAS VIRGENS.S, 3 j, 11-13.XII.1965, R. Levins & Citron

(AMNH); Saint John (Johns Folly Bay), ?, 20.11.1970, H. L. & F. Levi (MCZ). SAN MARTIN. Philipsburg, 29,

09.11.1968, B. Malkin (AMNH). GUADALOUPE. Gombeyene,S (MNHN). DOMINICA. Salibia, 2, 27-30.1.1938,

B. Malkin (AMNH). GRENADA. Saint Georges, 3d, 03.V1.1950, L. Isaacs (AMNH). TOBAGO. Buccoo Bay,

S, 15.VII.1965, E. N. K. Waering (AMNH). ARUBA. Orangestad, 2 9, 15.1X.1952, E. Macguire (AMNH);

Lago Colony, 9, 15.1X.1952, E. Macguire (AMNH). MEXICO. Quintana Roo: Playa del Carmen (20°37° O,

87º 04º N), 2 O, 28.1.1984, V. & B. Roth (AMNH). VENEZUELA. Distrito Federal: Caracas, 20, P &C.

Clarke (CAS); Aragua: Maracay (Acienda La Trindad), 2, 1940, P® C. Vogl (AMNH). COLÔMBIA. Norte de

Santander: Cucuta, $ (MNRJ 249); Cundinamarca: Santa Fé de Bogotá, S, | (MNRJ 771). BRASIL. 29, 9,

4; (MNR]J 709, 693, 658); Ceará: 9, W. M. Mann (MCZ); Ubajara, &, 1 j, 20.VI1.1978, P. F.L. Duarte (UFPB);

Paraíba: Várzea,9, 01.X1.1978, PF. L. Duarte (UFPB); Entre Junco e Santa Luzia (Km 269),9, 21.X11.1978, P.

F. L. Duarte (MCN 25139); Teixeira (Serra do Teixeira, Sítio Carirí), 0, 2 9, VII, VHI.1978, P. F. L. Duarte

(UFPB); Pernambuco: &, 9 (SMF 8314); Olinda (Fragoso), 2, Galileu (MCN 24961); Recife, 30, j (SMF

6831,6832, 13617); Buíque,9, 20.VIII. 1982, P. F.L. Duarte (UFPB); Tapera, &, j (MNRJ 708); Bahia: Itapicurü,

2, Leonardos (MNRJ 42235); Feira de Santana (Serra de São João, Distrito Maria Quitéria), &, 15.X.1989 (UEFS

A-003); (Parque Ipê), &, 9, 01.X.1991, V. dos Santos (IBSP 7118); Salvador (Barra), &, IV.1992 (IBSP 17558),

São Gonçalo dos Campos, 2, 03.V.1990 (UEFS A-134); Goiás: Anápolis,9, 31.V.1942, F. Lane (MZSP 12613);

Urutaí, 25, 1942, G. R. de Souza (MZSP 12612); Cataläo, 2, Blazer (MNRJ 143); Campo Piau, &, 19.V.1952,

Hoge (IBSP 4084); Minas Gerais: Diamantina (Minas da Serrinha), &, 2 9, 1945, E. Cohn (AMNH); Belo

Horizonte, 9, D. Walters (AMNH); Poços de Caldas, 2, 09.V1.1964, J. Becker et al. (MNRJ 13208); Espírito

Santo: Linhares (Lagoa Yuparaná),9, 05.11.1965, H. Britski (MZSP 3513); Cariacica (Duas Bocas), S, I. 1987,

R.L.C. Baptista (CRB 3286); Bom Jesus do Norte,9, VII. 1986, R. L. C. Baptista (CRB 399); Rio de Janeiro:

9 (MNRJ 705); Bom Jesus de Itabapoana, 9, 1.1984, R. L. C. Baptista (CRB 543); Maricá, O, 111.1987, R.L. €.

Baptista (CRB 1383); Niterói (Fonseca), &, 13.1.1986, W. Wilson (CRB 3039); Rio de Janeiro, 25, X, XT.1985,

R. L. C. Baptista (CRB 403, 404); 9, VII.1986, R. L. C. Baptista (CRB 770); (Quinta da Boa Vista), ©,

26.V III. 1986 (MNRJ); (Barra da Tijuca), 9, 17.X.1992, H. H. F. Alvarenga (MNRJ); São Paulo: São José do

Rio Preto,O, 1965, Vizotto (MZSP 3569); Tabatinga (Fazenda Itaquerê),92, 23.1V.1968, K. Lenko (MZSP 12615);

Araraquara,9, V.1960 (IBSP 1538); Presidente Wenceslau,®, 12.VII.1950, (IBSP 443): São Carlos, S, 20.VI1.1982,

J. Henrique (MCN 24931); Campinas, S, 39, N. Freitas (MNRJ 723);6, V.1995, C. Bertin (IBSP 6436); Ilha dos

Búzios, 29, 16.X.1963, Exped. Dept. Zool. (MZSP 12614); Paraná: Curitiba, 9, HI.1945 (MHCI 3265): Paranaguá

(Ilha do Mel),9,3, S. Caron (MHCI).

Xeropigo smedigari (Caporiacco), comb. nov.

(Figs. 168-171)

Corinna smedigari Caporiacco, 1955:377, fig. 16 (holótipo 2, MUCV XTI-816, Maiquetia, Distrito Federal,

Venezuela, 30.X.1948, Marcuzzi, examinado): BRIGNOLI, 1983:556.

Diagnose. Machos de Xeropigo smedigari diferem dos de X. tridentiger pelo lobo

dorsal da ATR bífido; PTX sem projeção espiniforme; reservatório com duas voltas

proximais (figs. 168, 169); fêmeas diferem pelo epígino sem depressão mediana anterior

e septo transversal da borda posterior pouco desenvolvido (figs. 170).

Descrição. Macho (Port of Spain, Trinidad). Carapaça, enditos e lábio castanho-

avermelhados, quelíceras mais escuras, esterno e pernas amarelos; dorso do abdômen

cinza com manchas amarelas irregulares e uma faixa longitudinal amarela com extensões

laterais pouco nítidas; ventre do abdômen amarelo.

Comprimento total 8,9. Carapaça: comprimento 4,3, largura 3,6, altura 1,5: clípeo, altura 0,45. Olhos:

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 59

Figs. 162-171. Xeropigo tridentiger (O. Pickard-Cambridge): 162, fêmea, cefalotórax e abdômen, dorsal; 163,

fêmea, cefalotórax, lateral; 164, palpo, ventral; 165, palpo, retrolateral; 166, epígino, ventral; 167, epígino, dorsal.

X. smedigari (Caporiacco): 168, palpo, ventral; 169, palpo, retrolateral; 170, epígino, ventral; 171, epígino, dorsal.

Abreviatura: PTX, processo tegular de Xeropigo. Figs. 162, 163 (barra, 2 mm); 164-171 (barra, 0,5 mm),

respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

60 BONALDO

fila anterior 1,35, posterior 1,55; QOM: comprimento 0,7, largura anterior 0,8, largura posterior 0,75; diämetros:

OMA 0,35, OLA 0,27, OMP 0,23, OLP 0,25; interdistäncias: OMA-OMA 0,15, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

0,25, OMP-OLP 0,32, OLA-OLP 0,05. Queliceras: comprimento 2,1; retromargem com 4 dentes subiguais,

separados. Esterno: comprimento 1,15, largura 1,05. Abdömen: comprimento 4,6, largura 2,3. Pernas: comprimento

relativo 4123. I- fêmur 4,2/ patela 1,8/ tibia 3,8/ metatarso 3,4/ tarso 2,1/ total 15,3; II - 3,9/1,6/3,4/3,2/1,9/14,0;

II - 3,7/1,5/2,9/3,4/1,7/13,2; IV - 4,4/1,7/3,7/4,7/1,8/16,3. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1: tíbia v1p-2-2-

2-2-2-0; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia v1p-2-2-2-2-0. IN - fêmur d1-1-1, pQ-1-1-1, r0-1-1-1;

tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-21. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1,70-1-1-1: tíbia pl-1, rl-

1, v2-2-2; metatarso p2-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 168, 169.

Fömea (Port of Spain, Trinidad). Coloragäo como no macho.

Comprimento total 10,3. Carapaça: comprimento 4,4, largura 3,5, altura 1,35; clipeo, altura 0,37. Olhos:

fila anterior 1,32, posterior 1,47; QOM: comprimento 0,65, largura anterior 0,75, largura posterior 0,68; diâmetros:

OMA 0,32, OLA 0,25, OMP 0,22, OLP 0,23; interdistâncias: OMA-OMA 0,17, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,25, OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 2,0; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 2,35, largura 2,2. Abdômen: comprimento 5,5, largura 3,7. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 -

fêmur 4,1/ patela 1,8/ tíbia 3,6/ metatarso 3,1/tarso 2,0/ total 14,6; II - 3,9/1,7/3,1/3,0/1,9/13,6; III - 3,5/1,5/2,8/

3,2/1,6/12,6; IV - 4,4/1,7/3,7/4,6/1,7/16,1. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso

v2-2. 11 - fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia v1p-2-2-2-2: metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1,10-1-1-1; tíbia pl-

1,rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-0-1-1: tíbia pl-1,r1-1,v2-2-2;

metatarso p1-1-1, rl-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 170, 171.

Variação. Comprimento: (2 5) total 8,9-9,4, carapaça 4,3-4,4, fêmur I 4,2-4,3; (3 9) total 8,2-8,8,

carapaça 3,7-4,2, fêmur 1 3,4-3,7.

Distribuição. Norte da Venezuela e Trinidad.

Material examinado. TRINIDAD. Maracas Valley, O, 11.1972, J. A. L. Cooke (AMNH); Port of Spain, O,

92. 14.11.1964, C. E. Ross (CAS); 1 mi. W. Morne, 2, 23.V1. 1968, J. Boss (AMNH); Saint Andrew (Tururi,

Brigand Hill), 21.VI1.1979, L. N. Sorkin (AMNH).

Paradiestus Mello-Leitäo, revalidado

Paradiestus MeLLO-LEITÃO, 1915:141 (espécie-tipo por designação originale monotipia, Paradiestus aurantiacus

Mello-Leitäo, 1915); sinonimizado com Corinna por MeLLO-LeITÃO, 1925:455; sinonimizado com Diestus

porMELLO-LeITÃO, 1947:287;BonnET, 1958:3325.

Diagnose. Carapaça com a região cefálica mais escura que a torácica (figs. 172,

173); fila de olhos anteriores reta, OLA obliquos; quelíceras com um sulco longitudinal

conspícuo na face retrolateral; coxa I mais robusta que as demais, com pêlos inseridos

em tubérculos. Palpo do macho com condutor membranäceo; processo tegular (PTP)

associado à base do êmbolo (figs. 95, 175, 178). Epígino com duas aberturas de copulação;

vulva com PVP escavada, com bordas proeminentes (figs. 176, 177, 180, 181).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 10,4-22,1. Carapaca suboval,

pouco mais longa que larga; com poucas cerdas eretas na região ocular; com granulações

finas esparsas, mais abundantes na região ocular; maior largura entre as coxas II e III,

maior altura sobre a inserção do palpo. Região cefálica baixa, delimitada pela coloração

mais escura, estreitamento pouco acentuado; margem anterior truncada, sem tubérculo

interocular (fig. 172); região torácica gradualmente rebaixada (fig. 173); sulco torácico

longo e profundo, geralmente com o mesmo comprimento do QOM; invaginação mediana

da margem posterior ausente ou pouco pronunciada. Clípeo baixo, altura igual ou menor

que o diâmetro dos OMA. Fila de olhos anteriores reta, com os olhos laterais oblíquos;

fila de olhos posteriores reta ou levemente procurva; QOM mais largo que longo, largura

anterior nitidamente maior que a posterior; cômoro ocular lateral pouco conspícuo.

Olhos médios e laterais posteriores circulares, laterais anteriores subovais; OMA maiores,

demais subiguais em tamanho. Interdistâncias: OMA-OMA separados por menos de

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 61

| um diâmetro; OMA-OLA por menos da metade do diâmetro dos OMA; OMP-OMP por

| até um diâmetro e meio; OMP-OLP por cerca de dois diâmetros dos OMP; OLA-OLP

| por menos da metade do diâmetro dos OLP. Chilum inteiro, liso, glabro. Quelíceras

| menores que a metade do comprimento da carapaça: pouco geniculadas; face frontal

| granulada; retrolateral com estrias pouco evidentes e um sulco longitudinal conspícuo;

| côndilo basal subtriangular; retromargem do sulco subungueal com 4 a 5 dentes grandes,

| separados; garra robusta, com cerca de um terço do comprimento da quelícera. Enditos

| convergentes, promargem côncava, retromargem fortemente escavada. Lábio pouco mais

| longo que largo, algo maior que a metade do comprimento dos enditos. Esterno pouco

| mais longo que largo; pouco hirsuto, pêlos não-inseridos em tubérculos; rebordo nítido;

| laterais da margem anterior projetadas; escavações esternais ausentes.

Pernas longas, pouco robustas, cobertas por pêlos simples e plumosos (fig. 40);

comprimento relativo 1423; Coxa I com pêlos inseridos em tubérculos conspícuos, demais

| coxas com pêlos não-inseridos em tubérculos. Tíbia I com 6 pares de espinhos ventrais

(espinho retrolateral do par mais proximal fregüentemente ausente); metatarso I com 2

pares de espinhos ventrais. Escópulas pouco densas, presentes em todos os tarsos e nos

| terços distal e médio dos metatarsos I e II; metatarsos III e IV com denso tufo de cerdas

ventro-distais; unhas tarsais pouco pectinadas, com cerca de 5 dentes curtos; pêlos

| subungueais densos; tricobótrias tarsais (fig. 61) distribuídas irregularmente sobre a

superfície dorsal; órgão tarsal (fig. 69) subapical; unha do tarso do palpo da fêmea

| pectinada, com dentes curtos; trocanteres I e II não-recortados, III e IV levemente

| recortados.

| Abdômen com abundantes pêlos plumosos e poucas cerdas eretas; scutum dorsal

| geralmente ausente em ambos os sexos ou representado por uma mancha mais escura,

| restrita ao terço anterior do abdômen; scutum ventral ausente em ambos os sexos;

| tubérculo traqueal ausente. Cólulo conspícuo, subtriangular, densamente coberto por

| pêlos simples.

| Palpo do macho. Tíbia longa, com cerca da metade do comprimento do címbio;

ATR simples, sem PV reconhecível em P giganteus, bilobada, com PV, em P aurantiacus;

címbio sem PCr, com PCp pouco desenvolvido (figs. 174, 178); subtégulo inteiro; fundus

não-alargado, no tégulo; PTd de ápice não-dobrado em gancho (fig. 95). Tégulo amplo,

| com reservatório de percurso helicoidal e PTP apical, de ápice agudo, associado à base

do êmbolo, ventral em P. giganteus (fig. 178), retrolateral em P aurantiacus (fig. 175).

| Condutor membranäceo (fig. 182); êmbolo filiforme, fusionado ao tégulo, de inserção

| apical, ventral em P. giganteus (fig. 178) e subapical, retrolateral em P. aurantiacus

| (fig. 175). Epígino com duas aberturas de copulação amplas, anteriores e separadas

| entre si em P. aurantiacus (fig. 176); pequenas, medianas e contíguas em P. giganteus

(fig. 180). Vulva com PVP esclerotinizada, com um par de projeções côncavas, separadas

entre si em P. aurantiacus (fig. 177) e contíguas em P. giganteus (fig. 181); ductos

copulatórios amplos, largos; em P. aurantiacus, espermatecas secundárias pouco

desenvolvidas, divergentes, de tamanho similar ao das espermatecas primárias; em P.

giganteus, espermatecas secundárias bem desenvolvidas, globulares, maiores que as

primárias (figs. 177, 181).

Elenco. Cinco espécies:

Paradiestus aurantiacus (Mello-Leitão), revalidada, comb. restaur. (pág. 62).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

62 BONALDO

Paradiestus egregius (Simon), comb. nov. - Brasil.

Corinna egregia Sımon, 1896 (sintipos MNHN, examinados).

Paradiestus vitiosus (Keyserling), comb. nov. - Brasil.

Hypsinotus vitiosus KEYSERLING, 1891 (holötipo BMNH, examinado).

Corinna vitiosa; PETRUNKEVITCH, 1911.

Paradiestus giganteus (Karsch), comb. nov. (pág. 63).

Paradiestus penicillatus (Mello-Leitão), comb. nov. - Brasil.

Corinna penicillata Mecto-LerrÃo, 1939a (holótipo IBSP, examinado).

Paradiestus aurantiacus Mello-Leitão, revalidada, comb. restaur.

(Figs.172-177)

Paradiestus aurantiacus MeLLO-LeITÃo, 1915:142 (síntipos 2, j, MNRJ 42164, Parque Nacional do Itatiaia,

Itatiaia, Rio de Janeiro, Brasil, examinados, aqui designados lectótipoS, paralectótipo j); sinonimizada com

Diestus alticeps (Keyserling, 1891) porMELLo-LeıtAo, 1947:287.

Corinna aurantiaca;, MELLO-LEITÃO, 1925:455.

Diagnose. Machos de Paradiestus aurantiacus diferem dos de P. giganteus pela

presenga de um processo tegular prolätero-apical e &mbolo e PTP deslocados

retrolateralmente (figs. 174, 175); fêmeas diferem pelo epigino com aberturas de

copulação amplas, separadas; espermatecas secundárias, visíveis por transparência,

pequenas e divergentes (fig. 176).

Descrição. Macho (Parque Nacional de Itatiaia, Rio de Janeiro). Carapaça amarela,

gradualmente mais escura na região cefálica, região ocular castanho-avermelhada;

quelíceras castanho-avermelhadas escuras, enditos e lábio castanho-avermelhados;

esterno amarelo, bordas castanhas; pernas amarela, abdômen amarelo-claro uniforme.

Comprimento total 10,4. Carapaça: comprimento 4,9, largura 3,9, altura 1,4; clipeo, altura 0,3. Olhos:

fila anterior 1,6, posterior 1,82: QOM: comprimento 0,72, largura anterior 0,9, largura posterior 0,82; diâmetros:

OMA 0,37, OLA 0,32, OMP 0,3, OLP 0,27; interdistäncias: OMA-OMA 0,22, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP

0,27, OMP-OLP 0,4, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 2,3; retromargem com 4 dentes iguais, separados.

Esterno: comprimento 2,5, largura 2,25. Abdômen: comprimento 5,5, largura 3,4. Pernas: comprimento relativo

1423. 1 - fêmur 5,0/ patela 2,1/ tíbia 4,9/ metatarso 4,3/ tarso 2,2/ total 18,5; II - 4,7/2,0/4,1/3,8/2,1/16,7; HI -

3,9/1,7/3,2/3,4/1,6/13,8; IV - 5,0/1,8/4,5/5,0/1,8/18,1. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-0-1-1; tíbia v 1p-2-2-2-

2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia v1p-2-1p-2-1p-2: metatarso v2-2-0. HI - fêmur d1-1-0,

p0-1-1,r0-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-0; metatarso p1-1-0, r1-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-0, p0, r0-0-1; tíbia rl-

1, v2-2-0; metatarso p1-1-0, r1-1-0, v2-2-1. Palpo: figs. 174, 175.

Fêmea (Parque Nacional de Itatiaia, Rio de Janeiro). Coloração como no macho.

Comprimento total 15,3. Carapaça: comprimento 6,5, largura 5,3, altura 2,8: clípeo, altura 0,5. Olhos:

fila anterior 2,07, posterior 2,5; QOM: comprimento 1,07, largura anterior 1,15, largura posterior 1,02; diâmetros:

OMA 0,47, OLA 0,4, OMP 0,32, OLP 0,37; interdistâncias: OMA-OMA 0,32, OMA-OLA 0,12, OMP-OMP

0,37, OMP-OLP 0,6, OLA-OLP 0,17. Quelíceras: comprimento 3,5; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 3,4, largura 2,9. Abdômen: comprimento 8,9, largura 6,1. Pernas: comprimento relativo 1423. 1-

fêmur 6,5/ patela 3,0/ tíbia 5,9/ metatarso 5,1/tarso 2,7/ total 23,2; II - 6,2/2,8/5,3/4,8/2,4/21,5; HI - 5,2/2,5/4,2/

4,4/2,0/18,3; IV - 6,5/2,6/5,6/6,3/2,1/23,1. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia vlp-2-2-2-2-2; metatarso |

v2-2-0. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1, r0-1-1; tíbia

pl-1, rl-1, v2-2-0; metatarso pl-1-0,r1-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-0,p0-1-0, r0-0-1; tíbiarl-1, v2-2-0; metatarso

p1-1-0,r1-1-0, v2-2-1. Epígino: figs. 176, 177.

Variação. Comprimento: (35) total 10,4-13,7, carapaça 4,9-6,5, fêmur 15,0-7,0; (89) total 12,0-17,4,

carapaça 6,1-7,9, fêmur I 6,0-7,0.

Distribuição. Sudeste do Brasil.

Material examinado. BRASIL. Minas Gerais: Itamonte, Parque Nacional do Itatiaia (Brejo da Lapa, 22º

21º 45” S 44° 44'06”0, 2.200m); 26, 49, 05-06.11.1997, A. Kury, R. Pinto-da-Rocha & L. Mestre (MNRJ

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 63

; 13523; MCN 29882); Rio de Janeiro: Itatiaia (Parque Nacional do Itatiaia), &, 39, j, Padberg (MNRJ 41410,

| 41411, MCN 28459 ex MNRJ 41411); São Paulo: Campos do Jordão, 9, j, 17.XII.1944, F. Lane (MZSP 12562).

Paradiestus giganteus (Karsch), comb. nov.

(Figs. 40, 61, 69,95, 178-182)

| Corinna gigantea KarscH, 1880:375, pr. 12, figs. 3, 3a, 3b (holötipo &;, Brasil, sem dados específicos de

| localidade, Sello, ZMB 2141, examinado); PETRUNKEVITCH, 1911:466; RoEWER, 1954:597:; Bonner, 1956:1211.

Diagnose. Machos de Paradiestus giganteus diferem dos de P. aurantiacus pela

ausência do processo tegular prolátero-apical e pelo êmbolo e PTP não-deslocados

| retrolateralmente (figs. 178, 182); fêmeas diferem pelo epígino com aberturas de

| copulação pequenas, contíguas e pelas espermatecas secundárias, visíveis por

transparência, grandes e paralelas (fig. 180).

Descrição. Macho (Cambará do Sul, Rio Grande do Sul). Carapaça castanho-

avermelhada, região cefálica castanho-avermelhada escura, quelíceras castanho-

| avermelhadas escuras, enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados, pernas amarelas,

| coxa I castanho-escura, tíbias, metatarsos e tarsos castanho-avermelhados; abdômen

| cinza, dorso mais escuro na metade posterior, ventre cinza-claro.

Comprimento total 16,9. Carapaça: comprimento 8,2, largura 6,6, altura 2,9; clípeo, altura 0,5. Olhos:

| fila anterior 2,45, posterior 2,8; QOM: comprimento 1,1, largura anterior 1,35, largura posterior 1,2; diâmetros:

OMA 0,55, OLA 0,4, OMP 0,35, OLP 0,4; interdistâncias: OMA-OMA 0,35, OMA-OLA 0,2, OMP-OMP 0,5,

OMP-OLP 0,65, OLA-OLP 0,25. Quelíceras: comprimento 4,1; retromargem com 6 dentes subiguais, separados.

| Esterno: comprimento 4,1, largura 3,6. Abdômen: comprimento 8,7, largura 4,5. Pernas: comprimento relativo

| 1423. 1 - fêmur 8,6/ patela 3,7/ tíbia 8,5/ metatarso 7,5/ tarso 3,5/ total 31,8; II - 7,9/3,5/7,2/6,8/3,1/28,5; III -

| 6,5/3,0/5,4/5,8/2,5/23,2; TV - 8,1/3,1/7,1/8,1/2,6/29,0. Espinulagäo: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia v2-2-2-2-2-

| 2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1,

r0-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-0; metatarso p1-1-0, r1-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-0, p0-1-0, r0-0-1; tíbia p1-0,

rl-1, v2-2-0; metatarso p1-1-0,r1-1-0, v2-2-1. Palpo: figs. 178, 179, 182.

Fêmea (Canela, Rio Grande do Sul). Coloração como no macho.

Comprimento total 18,9. Carapaça: comprimento 8,7, largura 7,1, altura 3,1; clípeo, altura 0,55. Olhos:

| filaanterior 2,6, posterior 3,05; QOM: comprimento 1,15, largura anterior 1,35, largura posterior 1,25; diâmetros:

| OMA 0,5, OLA 0,35, OMP 0,35, OLP 0,35; interdistâncias: OMA-OMA 0,4, OMA-OLA 0,25, OMP-OMP

0,55, OMP-OLP 0,75, OLA-OLP 0,3. Quelíceras: comprimento 4,5; retromargem como no macho. Estero:

comprimento 4,3, largura 3,8. Abdômen: comprimento 10,0, largura 6,1. Pernas: comprimento relativo 1423. I-

fêmur 8,3/ patela 3,8/ tíbia 7,8/ metatarso 6,7/tarso 3,2/ total 29,8; II - 7,7/3,6/6,8/6,3/3,0/27,4; III - 6,4/3,1/5,5/

5,1/2,4/23,1; IV - 8,0/3,7/7,1/8,0/2,6/29,4. Espinulagäo: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia vlp-2-2-2-2-2-2; metatarso

| v2-2-0. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1-1, r0-1-1; tíbia

pl-1, rl-1, v2-2-0; metatarso p1-1-0,r1-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-0, p0-1-0; tíbia p1-1, r1-1, v2-2-0; metatarso

| pl-1-0,r1-1-0, v2-2-1. Epígino: figs. 180, 181.

Variação. Comprimento: (95) total 12,5-18,2, carapaça 6,0-8,8, fêmur I 6,3-9,1; (79) total 15,9-22,1,

| carapaça 7,4-8,9, fêmur I 7,1-8,8.

Distribuição. Sudeste e sul do Brasil.

Material examinado. BRASIL: Minas Gerais: Sapucaí-Mirim,S, III.1989, Novaes (IBSP 4926); Santa

Bárbara (Serra do Caraça), 6, 12-23.1X.1961, K. Lenko, Kloss & U. Martins (MZSP 6683); Lima Duarte (Parque

| Estadual Ibitiboca), 9, VII.1987, R. N. Feio (MNRJ 13204); São Paulo: Jundiaí (Parque Estadual da Serra do

Japí), &, 27-28.1V.1996, A. D. Brescovit (IBSP 7033); São Roque, S, IV.1980, A. C. Caragande (IBSP 4121);

| Mogi das Cruzes (Rancho das Carmelitas), S, VII.1976 (MZSP 12561); Mairinque, &, IV.1989, A. de Mello

| (IBSP 4927); Cotia,O, X.1981, C. Pestana (IBSP 4957); Paraná: Porto União da Vitória, 5, 31.X.1966, B. Behr

(IBSP 6012); Santa Catarina: Campos Novos, 9, 16-24.V.1988, F. Franco (MCTP 0477); Rancho Queimado, 3

| 2, 13-15.1.1995, A. B. Bonaldo & L. A. Moura (AMNH, CAS, MCZ); Rio Grande do Sul: Bom Jesus, &,

| 02.X1.1976, P. Braun (MCN 3481); Cambará do Sul, 25,3, 11-13.IV, 19-21.XII.1994, A. B. Bonaldo &L. A.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

64 BONALDO

Figs. 172-181. Paradiestus aurantiacus Mello-Leitão: 172, fêmea, cefalotórax e abdômen, dorsal; 173, fêmea,

cefalotörax, lateral; 174, palpo, ventral; 175, palpo, retrolateral; 176, epígino, ventral; 177, epígino, dorsal; P.

giganteus (Karsch): 178, palpo, ventral; 179, palpo, retrolateral; 180, epígino, ventral; 181, epígino, dorsal.

Abreviaturas: DF, ducto de fertilização; EP, espermatecas primárias; ES, espermatecas secundárias; PTP, processo

tegular de Paradiestus; PVP, placa vulvar posterior. Figs. 172, 173 (barra, 2 mm); 174-181 (barra, 0,5 mm),

respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 65

| Moura (MCN 25499, 25972); Canela, 2, 1980, J. W. Thomé (MCN 9583); Gramado, 9, 09.11.1997, G. S.

| Carvalho (MCN 28458).

Abapeba gen. n.

Espécie-tipo. Corinna lacertosa Simon.

Etimologia. O nome genérico, feminino, vem do tupi, da reunião das palavras

| aba, pêlo e peba, chato, em alusão ao aspecto dos pêlos clavados no tegumento.

| Diagnose. Pêlos modificados em forma de clava no cefalotórax, pernas e abdômen

‚ (figs. 45-50, 192). Palpo do macho com ATR única, com PV; reservatório longo, muito

| espiralado; condutor hialino (figs. 183, 187, 193, 199, 203). Epígino com uma abertura

| de copulagäo; espermatecas primárias posicionadas posteriormente à abertura de

| copulação ou no mesmo nível desta (figs. 190, 201, 209).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 4,8-16,2. Carapaça suboval,

| pouco mais longa que larga, moderadamente hirsuta, com pêlos clavados e simples;

com granulações finas; maior largura entre as coxas II e III, maior altura sobre a inserção

anterior sub-reta no grupo lacertosa, mais convexa nos outros grupos; tubérculo

| interocular pouco elevado (fig. 192); carapaça baixa, região torácica gradualmente

| rebaixada; sulco torácico curto e profundo, menor que o comprimento do QOM;

| margem posterior sub-reta, com invaginação mediana pouco acentuada. Clípeo baixo,

| pouco maior que um diâmetro dos OMA. Fila de olhos anteriores levemente procurva;

| fila de olhos posteriores procurva ou levemente procurva; QOM subquadrado, tão longo

| quanto largo ou pouco mais longo que largo, larguras anterior e posterior

| aproximadamente iguais; cômoro ocular lateral conspícuo. Olhos médios e laterais

| posteriores circulares, laterais anteriores subovais; OMA maiores, restantes subiguais

em tamanho. Interdistâncias: OMA-OMA separados por pouco mais de meio diâmetro;

| OMA-OLA por no máximo meio diâmetro dos OMA; OMP-OMP por um e meio a dois

diâmetros; OMP-OLP por dois e meio a três diâmetros dos OMP; OLA-OLP

subcontíguos. Chilum dividido, liso, glabro. Quelíceras geniculadas, com cerca da metade

do comprimento da carapaça; face frontal granulada; retrolateral com estrias pouco

conspícuas; côndilo basal triangular; retromargem do sulco subungueal com 5 dentes

fortes, subcontíguos; garra com cerca de um terço do comprimento da quelícera. Enditos

pouco convergentes, promargem pouco côncava, sub-reta, escavação retromarginal pouco

|, conspicua; lábio tão longo quanto largo, pouco maior que a metade do comprimento dos

| enditos. Esterno pouco mais longo que largo, coberto por pêlos inseridos em tubérculos

e cerdas eretas esparsas; rebordo nítido a partir do terço anterior; laterais da margem

anterior projetadas; escavações esternais ausentes.

| Pernas longas e geralmente afiladas; robustas no grupo lacertosa; densamente

coberta por pêlos clavados (figs. 45-47, 49), pêlos plumosos ausentes; comprimento

relativo 4123; coxas com pêlos inseridos em tubérculos; tíbia I com 4 a 6 pares de

espinhos ventrais; metatarso I geralmente com 2 pares, em A. lacertosa, metatarso com

| um espinho adicional impar, apical. Escöpulas muito ralas, restritas aos tarsos I e II;

tarsos III e IV sem escópulas, com densa cobertura de cerdas espiniformes; metatarsos

| não-escopulados; metatarsos III e IV sem tufo de cerdas ventro-distais; unhas tarsais

| com 10 a 12 dentes curtos (figs. 29-31); pêlos subungueais densos, curtos; tricobótrias

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

66 BONALDO

Figs. 182-187. Corinninae, palpo do macho. Paradiestus giganteus (Karsch): 182, ápice do bulbo ventro-

retrolateral; Abapeba lacertosa (Simon): 183, tíbia e base do cimbio, ventro-retrolateral; 184, ápice do bulbo,

ventral;A. rioclaro sp. nov.: 185, apófise tibial retrolateral, ventro-retrolateral; 186, ápice do bulbo, ventral; A.

grassima (Chickering): 187, ápice do bulbo, retrolateral. Abreviaturas: C, condutor; E, êmbolo; PTP, processo

tegular de Paradiestus; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 67

| tarsais (fig. 62) distribuídas em duas filas dorsais; órgão tarsal apical em 4. lacertosa

| (fig. 70); unha do tarso do palpo da fêmea pouco pectinada; trocanteres I e II não-

| recortados, III e IV levemente recortados.

Abdômen coberto por pêlos clavados e simples (figs. 48, 50), sem pêlos plumosos;

| scutum dorsal apenas nos machos, pouco desenvolvido, restrito ao terço anterior (fig.

| 192); scutum ventral ausente em ambos os sexos; tubérculo traqueal ausente. Cölulo

| representado por um pequeno aglomerado de pêlos simples.

Palpo do macho. Tíbia geralmente curta, menor que a metade do comprimento do

| címbio; ATR simples, PV presente (figs. 183, 185, 189, 197, 203). Cimbio com PCr

pouco desenvolvido; em A. lacertosa, margem retrolateral sub-basal inflada (fig. 183);

| PCp bem desenvolvido nos grupos lacertosa e abalosi (figs. 188, 199), ausente no grupo

| grassima. Subtégulo inteiro; fundus não-alargado, no tégulo; PTd de ápice em gancho

| (figs. 97-100); no grupo lacertosa, tégulo com uma projeção triangular subapical (figs.

184); no grupo abalosi, ápice do tégulo com um grande processo rombo direcionado

| retrolateralmente, circundando o condutor por trás (fig. 186); no grupo grassima, tégulo

| com uma projeção retrolateral onde se insere o condutor (figs. 187, 207); reservatório

| intensamente espiralado (figs. 188, 199, 207). Condutor geralmente hialino,

| membranáceo em A. abalosi (fig. 197). Embolo fusionado ao tégulo, espiniforme nos

| grupos lacertosa e grassima (figs. 188, 207); no grupo abalosi, lameliforme, com um

| processo prolateral mediano (fig. 199). Epígino com uma abertura de copulação anterior

| (fig. 190), mediana (fig. 195) ou posterior (fig. 209); vulva com PVP bem desenvolvida

em 4. lacertosa (fig. 191), pouco desenvolvida em A. hoeferi (fig. 196) e no grupo

| abalosi (fig. 202); ausente no grupo grassima (figs. 206, 210). Espermatecas secundárias

| globulares no grupo lacertosa (fig. 196) e reniformes nos grupos abalosi e grassima

(figs. 202, 206); espermatecas primárias menores que as secundárias, pouco diferenciadas

| no grupo lacertosa (fig. 196), globulares, bem diferenciadas nos grupos abalosi e

| grassima (figs. 202, 206).

| Elenco. Dezesseis especies:

Abapeba abalosi (Mello-Leitäo), comb. nov. (päg. 71).

Abapeba cleonei (Petrunkevitch), comb. nov. - Saint Thomas.

Corinna cleonei PETRUNKEVITCH, 1926 (holótipo Peabody Museum, New Haven, näo-examinado).

Abapeba echinus (Simon), comb. nov. - Brasil.

Corinna echinus Sımon, 1896 (holötipo MNHN, examinado).

Abapeba guanicae (Petrunkevitch), comb. nov. - Porto Rico.

Corinna guanicae PETRUNKEVIICH, 1930 (holótipo Peabody Museum, New Haven, não-examinado).

Abapeba grassima (Chickering), comb. nov. (päg. 73).

Abapeba hoeferi sp. nov. (päg. 69).

Abapeba lacertosa (Simon), comb. nov. (päg. 68).

Abapeba luctuosa (F. ©. Pickard-Cambridge), comb. nov. - Mexico.

Corinna luctuosa F. ©. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899 (holötipo BMNH, examinado).

Abapeba lugubris (Schenkel), comb. nov. - Venezuela.

Corinna lugubris SCHENKEL, 1953 (holötipo NHMB, examinado).

Abapeba pennata (Caporiacco), comb. nov. - Guiana.

Corinna pennata Caroriacco, 1947 (tipos näo-examinados).

Abapeba rioclaro sp. nov. (päg. 71).

Abapeba kochi (Petrunkevitch), comb. nov. - localidade desconhecida.

Hypsinotus rubripes L. KocH, 1866 (pré-ocupado em Corinna por C. L. Koch, 1842); (síntipos BMNH, examinados).

Corinna kochi PETRUNKEVITCH, 1911 (nome novo).

Abapeba saga (F. O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - México.

Corinna saga F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899 (holötipo BMNH, examinado).

Abapeba sicarioides (Mello-Leitão), comb. nov. - Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

68 BonaLDO

Lausus sicarioides MELLo-LEiTAo, 1935 (holötipo IBSP, examinado).

Abapeba taruma sp. nov. (pág. 74).

Abapeba wheeleri (Petrunkevitch), comb. nov. - Porto Rico.

Corinna wheeleri PETRUNKEVITCH, 1930 (holótipo Peabody Museum, New Haven, não-examinado).

Grupo lacertosa

Diagnose. Palpo do macho com projeção tegular triangular subapical; ápice do

tégulo sem processo rombo retrolateral; condutor curto; base do êmbolo sem escavação

ou área esclerotinizada (figs. 97, 98, 184, 188,193). Epígino com abertura de copulação

anterior ou mediana e um par de depressões laterais posteriores (figs. 190, 195).

Abapeba lacertosa (Simon), comb. nov.

(Figs. 29, 45, 70, 97, 98, 183, 184, 188-191)

Corinna lacertosa Simon, 1897b:885 (síntipos O, 9, Ilha de Saint Vincent MNHN 18974, examinados; aquí

designados lectótipo & e paralectötipo 9); PETRUNKEVITCH, 191 1:466;RoEwER, 1954:597;Bonner, 1956:1213.

Diagnose. Machos de Abapeba lacertosa diferem dos de A. hoeferi pela ATR do

palpo do macho com uma escavação prolateral, sem processo laminar; projeção tegular

triangular próxima da inserção do condutor; êmbolo de ápice afilado (figs. 183, 184,

188, 189); epígino com abertura de copulação anterior, de margem posterior em “U”;

depressões laterais posteriores profundas e mais longas que largas (fig. 190).

Descrição. Macho (lectótipo). Carapaça e quelíceras castanho-avermelhadas,

enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados claros, pernas amarelo uniforme, abdômen

cinza-escuro, sem padrão de colorido.

Comprimento total 11,1. Carapaça: comprimento 5,6, largura 4,9, altura 2,4: clípeo, altura 0,5. Olhos: fila

anterior 1,82, posterior 2,07; QOM: comprimento 0,75, largura anterior 0,97, largura posterior 0,82; diâmetros:

OMA 0,37, OLA 0,3, OMP 0,25, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,25, OMA-OLA 0,15, OMP-OMP

0,35, OMP-OLP 0,55, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 2,8; retromargem com 5 dentes iguais, contíguos.

Esterno: comprimento 3,05, largura 2,55. Abdômen: comprimento 5,7, largura 3,8; scutum dorsal inconspícuo.

Pernas: comprimento relativo: 4123. 1 - fêmur 5,5/ patela 2,5/ tíbia 5,1/ metatarso 4,4/ tarso 2,7/ total 20,2; II -

4,9/2,3/4,1/4,0/2,3/17,6; III - 4,3/2,0/3,5/3,8/2,0/15,6; IV - 5,7/2,2/5,0/5,5/2,5/20.9. Espinulação: I - fêmur d1-

1, p0-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso p0-0-1, r0-0-1, v2-2-1. II - fêmur dl-1, p0-1-1-1; tíbia p0-1-1, v2-2-2-2;

metatarso p0-1-1, r0-0-1. HI - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1,r0-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1,

v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, pO-1-1, r0-0-1; tíbia, pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs.

183, 184, 188, 189.

Fêmea (paralectótipo). Coloração como no macho.

Comprimento total 13,4. Carapaça: comprimento 5,5, largura 4,5, altura 2,2: clípeo, altura 0,4. Olhos: fila

anterior 1,65, posterior 1,9; QOM: comprimento 0,55, largura anterior 0,85, largura posterior 0,72; diâmetros:

OMA 0,32, OLA 0,3, OMP 0,27, OLP 0,27; interdistâncias: OMA-OMA 0,25, OMA-OLA 0,2, OMP-OMP

0,22, OMP-OLP 0,5, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 2,9: dentes como no macho. Esterno: comprimento

2,8, largura 2,4. Abdômen: comprimento 8,2, largura 5,9, sem scutum. Pernas: comprimento relativo como no

macho. I - fêmur 4,9/ patela 2,2/ tíbia 4,5/ metatarso 3,7/tarso 2,2/total 17,5; II - 4,5/2,1/3,6/3,4/2,0/15,6; III -

4,0/1,8/3,1/3,3/1,7/13,9; IV - 5,2/2,2/4,5/4,9/2,3/19,1. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2;

metatarso p0-0-1, r0-0-1, v2-2-1. II - fêmur dl-1, p0-1-1; tíbia v2-1r-2-2; metatarso p0-0-1, r0-0-1, v2-2-1. III -

fêmur dl-1-1, p0-1-1-1,r0-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-

1-1, r0-0-1; tíbia pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,rl-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 190, 191.

Variação. Comprimento: (10 S) total 10,5-13,9, carapaça 5,2-7,1, fêmur I 4,8-6,2; (109) total 10,8-

16,2, carapaça 4,9- 6,9, fêmur 1 4,7-6,1.

Distribuição geográfica. Norte da América do Sul.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 69

Material examinado. TRINIDAD. St. Davis: Toco, 9, j, 14.11.1965, E. N. Kjellesvig (AMNH); St. George:

Arima (Arima Valley, Simla, 4 mi N Arima),®, 25.1V.1967, C. T. Collins (AMNH); Nariva (Cocal, Nariva Swamp),

| 6, 13.VII.1979, L. N. Sorkin (AMNH). VENEZUELA. Distrito Federal: Caracas, 9, 12.V1.1974, C. Ereu

| (MUCV); (San Jose del Avila), 2S, 1940, P°C. Vogl (AMNH); Miranda: Vista Hermosa (Quinta Lourdes), 9,

22.11.1951, A. Yanez (CPS 059): Bolivar: El Manteco, 29, 30.1V.1974, Salas & Salas (MUCV XTII-1052; XII-

| 1065); GUIANA. Rockstone, 9, j, 08.VI.1911, F. E. Lutz (AMNH); Tumatumaro (Rio Potaro), C', 28.V1.1927

| (AMNH). SURINAME. Moengo (Rio Boven Cottica, 54º 27° W, 5° 38' N),®, 16.V.1927 (AMNH); Marowijne

| (Langaman Kondre), 29, 15-30. VIII.1965, B. Malkin (AMNH, MZSP 12621); (Christian Kondre), 26,9,7 5, 1-

| 7.X.1963, B. Malkin (AMNH). GUIANA FRANCESA. Cayenne (Montabo),S, XI[.1981, S. Marchall (AMNH).

| BRASIL. Amazonas: Manaus (INPA),S, 06.1V.1987, H. Höfer (INPA); (Conjunto Petrus),S,j, 1993, T. Gasnier

| (MCN 25003); S, 04.11.1994, H. Höfer (MCN 25002); (Conjunto Mundo Novo), S, 02.1V.1991, F. Fé (UA 03);

| (Reserva Florestal Adolpho Ducke), 2, VIH. 1991, H. Höfer (SMNK); (Igapó Tarumã-Mirim),9, 8-10.VI.1987, H

| Höfer (SMNK); Pará: Belém, S, 23.VI1.1977 (MPEG); Acre: Rio Branco, O, 21.X.1995, E. V. Souza et al.

Abapeba hoeferi sp. nov.

(Figs. 192-196)

Holótipo s, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas, Brasil, 14-

22.VH1.1991, A. D. Brescovit (MCN 21436).

Etimologia. O nome específico é um patronímico em homenagem ao Dr. Hubert

| Höfer, coletor dos parátipos desta espécie e de um grande número de aranhas da Amazônia

Diagnose. Machos de Abapeba hoeferi diferem dos de A. lacertosa pela ATR do

palpo do macho sem escavação na face prolateral, com processo laminar subapical;

| projeção tegular triangular afastada da inserção do condutor; êmbolo de ápice rombo

| (figs. 193, 194); fêmeas diferem pela abertura de copulação mediana, de margem posterior

| sub-reta; depressões laterais posteriores rasas e mais largas que longas (fig. 195).

| Descrição. Macho (holótipo). Carapaça e quelíceras castanho-avermelhadas,

| enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados claros, pernas castanho-avermelhadas,

| com o terço distal das tíbias amarelo, dorso do abdômen violeta-claro, com dois pares

| de manchas amarelas pouco definidas na região anterior e uma mancha amarela em

| “Mº” na região posterior (fig. 192), ventre do abdômen amarelo.

| Comprimento total 6,2. Carapaça: comprimento 2,95, largura 2,65, altura 1,45; clípeo, altura 0,3. Olhos:

fila anterior 1,15, posterior 1,32; QOM: comprimento 0,55, largura anterior 0,67, largura posterior 0,57; diâmetros:

| OMA 0,3, OLA 0,22, OMP 0,17, OLP 0,2; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP 0,22,

| OMP-OLP 0,25, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,55; retromargem com 6 dentes subiguais, contíguos.

| Esterno: comprimento 1,6, largura 1,55. Abdômen: comprimento 3,1, largura 2,5. Pernas: comprimento relativo

| 4123. 1- fêmur 2,6/ patela 1,3/ tíbia 2,35/ metatarso 1,9/tarso 1,1/total 9,25; II - 2,45/1,2/1,95/1,8/1,0/8,4; III -

| 2,15/1,0/1,65/1,8/0,95/7,55; IV - 2,75/1,15/2,35/2,7/1,2/10,15. Espinulação: I- fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia v2-

| 2-2-2-2-2; metatarso v2-2. Il - fêmur dl-1; tíbia v2-2-2-2: metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, r0-0-1; tíbia pl-1,

| r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, r0-0-1; tíbia p1-1, r1-1, vlp-1p-2; metatarso

pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 193, 194.

Fêmea (parätipo). Coloração como no macho.

Comprimento total 7,6. Carapaça: comprimento 3,1, largura 2,9, altura 1,45; clípeo, altura 0,28. Olhos:

| fila anterior 1,15, posterior, 1,35; QOM: comprimento 0,5, largura anterior 0,65, largura posterior 0,57; diâmetros:

‚OMA 0,3, OLA 0,2, OMP 0,15, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,15, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP 0,22,

| OMP-OLP 0,32, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 1,6; dentes como no macho. Esterno: comprimento

‚ 1,65, largura 1,6. Abdômen: comprimento 4,2, largura 2,9. Pernas: comprimento relativo como no macho. I -

| fêmur 2,7/ patela 1,3/ tíbia 2,3/ metatarso 1,95/ tarso 1,0/ total 9,25; II - 2,5/1,25/1,95/1,8/0,95/8,45; III - 2,2/

| 1,05/1,7/1,85/0,9/7,7; TV - 2,95/1,25/2,45/2,75/1,15/10,55. Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-

| 2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1; tíbia vlr-2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur dO-0-1; tíbia pl-1,r1-1, v2-2-2;

| Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

70 BONALDO

Figs. 188-196. Abapeba lacertosa (Simon): 188, palpo, ventral; 189, palpo, retrolateral; 190, epigino, ventral;

191, epígino, dorsal; A. hoeferi sp. nov.: 192, macho, cefalotórax e abdômen, dorsal; 193, palpo, ventral; 194,

palpo, retrolateral; 195, epígino, ventral; 196, epígino, dorsal. Figs. 188-191, 192 (barras, 0,5 mm), 193-196

(barra, 0,25 mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 71

| metatarso p0-1-1, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-0-1, p0-0-1, r0-0-1; tíbia pl-1,r1-1, vlp-1p-2; metatarso pl-1-1,

| r1-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 195, 196.

Variação. Comprimento: (2J)) total 6,2-6,8, carapaça 2,95-3,25, fêmur I 2,55-2,6.

Distribuicäo geogräfica. Conhecida apenas da localidade-tipo.

Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke), 02.1X.1991,

| H. Höfer & T. Gasnier (ecletor de árvore), S, (SMNK);? (MCN 27728).

Grupo abalosi

Diagnose. Palpo do macho sem projeção tegular triangular subapical; ápice do tégulo

| com grande processo rombo, direcionado retrolateralmente, circundando o &mbolo por

| trás; condutor longo, acompanhando o êmbolo desde a base; base do êmbolo com escavação

| esclerotinizada; êmbolo com um processo submediano (figs. 186, 197, 199). Epígino com

abertura de copulação anterior, sem escavações laterais posteriores (fig. 201).

Abapeba abalosi (Mello-Leitão), comb. nov.

(Figs. 197, 198)

Corinna abalosi MeLLO-LEITÃO, 1942:416, fig. 41 (holótipod;, Colonia Doria, Santiago del Estero, Argentina,

XT.1940, Abalos, MLP 15530, examinado): RoEwER, 1954:594; ARROZPIDE, 1986:16.

Diagnose. Abapeba abalosi pode ser reconhecida pelo palpo do macho com

condutor membranáceo e êmbolo reto, com um pequeno processo basal (figs. 197, 198).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça castanho-avermelhada clara, quelíceras

castanho-avermelhadas, enditos, lábio e esterno castanho-claros, pernas amarelo-escuras,

| abdômen cinza, sem padrão de colorido.

Comprimento total 7,9. Carapaça: comprimento 3,8, largura 3,1, altura 1,35; clípeo, altura 0,37. Olhos:

fila anterior 1,12, posterior 1,25; QOM: comprimento 0,44, largura anterior 0,58, largura posterior 0,55; diâmetros:

OMA 0,22, OLA 0,17, OMP 0,17, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,17, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

| 0,25, OMP-OLP 0,27, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 2,0; retromargem com 5 dentes subiguais, os 2

| distais fusionados. Esterno: comprimento 1,85, largura 1,8. Abdômen: comprimento 4,1, largura 3,1. Pernas:

comprimento relativo 4123. 1 - fêmur 3.1/ patela 1,4/ tíbia 2,8/ metatarso 2,5/tarso 1,3/ total 11,1; II- 2,8/1,3/2,3/

2,4/1,0/9,8; III - 2,5/1,1/1,9/2,4/0,8/8,7; TV - 3,3/1,3/2,9/3,5/0,8/11,8. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1;

tíbia p0-1-0, v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-1-1: tíbia p0-1-1, v1p-2-2-2: metatarso v2-2. III -

fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-1-1; tíbia pl-1, r1-1, v2-2-2; metatarso p0-1-1, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, r0-0-

l; tíbia p1-1,r1-1, v1p-2-2; metatarso p0-1-0, r0-0-1, v2-2-1. Palpo: figs. 197, 198.

Fêmea. Desconhecida.

Variação. Comprimento: (2.5) total 7,4-7,9, carapaça 3,8-4,1, fêmur 1 3,1-3,6.

Distribuição. Norte da Argentina e Paraguai.

Material examinado. PARAGUAI.G,, Fiebrig (ZMB 4229).

Abapeba rioclaro sp. nov.

(Figs. 31, 46-48, 99, 185, 186, 199-202)

Holótipo s, Rio Claro, São Paulo, Brasil, XII.1942, F. S. Pereira (MZSP 10788).

Etimologia. O nome específico é um substantivo referente à localidade-tipo.

Diagnose. Machos de Abapeba rioclaro diferem dos de A. abalosi pelo condutor

hialino e êmbolo curvado em direção retrolateral, sem processo basal (figs. 186, 199,

200); fêmeas podem ser reconhecidas pela abertura de copulação coberta por um pequeno

escapo anterior e pela presença de uma área clara, circular, póstero-mediana (fig. 201).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

72 BONALDO

Figs. 197-202. Abapeba abalosi (Mello-Leitäo): 197, palpo, ventral; 198, palpo, retrolateral; Abapeba rioclaro

sp. nov.: 199, palpo, ventral; 200, palpo, retrolateral; 201, epigino, ventral; 202, epigino, dorsal. Todas as figuras

na mesma escala (barra, 0,25 mm).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 73

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça e quelíceras castanho-avermelhadas,

enditos, lábio, esterno e pernas castanho-claros, dorso do abdômen cinza-amarelado,

sem padrão de colorido, ventre amarelo.

Comprimento total 6,8. Carapaça: comprimento 3,4, largura 3,0, altura 1,6; clípeo, altura 0,35. Olhos: fila

anterior 1,1, posterior 1,27; QOM: comprimento 0,48, largura anterior 0,57, largura posterior 0,55; diâmetros:

OMA 0,25, OLA 0,22, OMP 0,17, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,15, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,25, OMP-OLP 0,27, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 1,9; retromargem com 5 dentes iguais, separados,

os 2 distais contíguos. Esterno: comprimento 1,8, largura 1,8. Abdômen: comprimento 3,4, largura 2,3. Pernas:

comprimento relativo 4123. I - fêmur 3,0/ patela 1,9/tíbia 2,7/ metatarso 2,6/tarso 1,1/total 11,3; II - 2,9/1,3/2,2/

2,4/1,0/9,8; III - 2,5/1,1/1,9/2,3/0,9/8,7; TV - 3,2/1,3/2,8/3,5/1,1/11,9. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia

v1-2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v1r-0-2-2-2; metatarso v2-2. HI - fêmur d1-1-1, pO-

1-0, r0-1-0; tíbia p1-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p0-1-1, r1-0-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, r0-0-1; tíbia pl-1,rl-

1, vlp-1p-1r; metatarso p0-1-1, r0-1-0, v2-2-1. Palpo: figs. 186, 199, 200).

Fêmea (parátipo, Rio Claro, São Paulo). Coloração como no macho, exceto dorso

do abdômen com pontuações amarelas esparsas.

Comprimento total 8,9. Carapaça: comprimento 3,9, largura 3,4, altura 1,8; clipeo, altura 0,37. Olhos: fila

anterior 1,12, posterior 1,32; QOM: comprimento 0,5, largura anterior 0,6, largura posterior 1,55; diâmetros:

OMA 0,27, OLA 0,2, OMP 0,18, OLP 0,2; interdistâncias: OMA-OMA 0,15, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,22, OMP-OLP 0,25, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 2,1; retromargem com 6 dentes subiguais,

separados. Esterno: comprimento 1,9, largura 1,9. Abdômen: comprimento 3,4, largura 4,9. Pernas: comprimento

relativo como no macho. I - fêmur 3,5/ patela 1,6/ tíbia 3,0/ metatarso 2,9/ tarso 1,1/total 12,1; II - 3,1/1,5/2,5/

2,6/1,0/10,7; HI - 2,7/1,2/2,6/2,6/0,9/10,0; IV - 3,6/1,4/3,0/3,8/1,1/12,9. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1;

tíbia v1-2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II- fêmur d1-1, p0-0-1: tíbia v 1r-0-2-2-2: metatarso v2-2. III - fêmur dl-1-1,

p0-1-0, r0-1-0; tíbia pl-1, rl-1, vlp-1r-2; metatarso p0-1-0, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, r0-0-1; tíbia pl-1,

rl-1, vlp-1p-2; metatarso p0-1-1,r1-1-0, v2-2-1. Epígino: figs. 201, 202.

Variação. Comprimento: (7 6) total 5,9-7,7, carapaça 3,1-3,7, fêmur I 2,9-3,6; (79) total 7,5-8,7,

carapaça 3,0-3,8, fêmur I 2,9-3,5. Alguns machos apresentam a apófise tibial retrolateral e o processo tegular

retrolateral um pouco menores do que o figurado.

Distribuição geográfica. Centro-oeste e sudeste do Brasil.

Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Brasília: &, VI.1995, R. Rezende (IBSP 6162); Mato Grosso: Três

Lagoas,S, X.1964, C.D.Z. (MZSP 6063); (Fazenda Canaã), 26, TV.1967, F. Lane (MZSP 12606); Mato Grosso

do Sul: Campo Grande, 9, 30.VII.1995, R. S. Bernilz (IBSP 6329); São Paulo: Onda Verde (Fazenda São João),

S, 1.1946, F. Lane (MZSP 12605); 9, Pirassununga (Emas), Schubart, (MNRJ 812); 2, 10.11.1948 (MZSP

7100); 49, Rio Claro, XTI.1942, F.S. Pereira (MZSP 10788):S, 9 (MCN 28312, Ex MZSP 10788); Piracaia,S,

1.1994, H. Gasparini (IBSP 5787).

Grupo grassima

Diagnose. ATR do palpo do macho com PV reduzido a pequeno gancho direcionado

retrolateralmente; tégulo sem projeção triangular subapical e processo rombo retrolateral;

condutor curto, inserido em uma projeção tegular subapical retrolateral; base do êmbolo

com área esclerotinizada não-escavada (figs. 187, 203, 207). Epígino com abertura de

copulação mediana ou posterior, sem escavações laterais posteriores (figs. 205, 209).

Abapeba grassima (Chickering), comb. nov.

(Figs. 30, 49, 50, 62, 100, 187, 203-206)

Corinna grassima CHIckERING, 1972:371, figs. 11-16 (holótipoG, parátipo 9, Ilha de Barro Colorado, Zona do

Canal, Panamá, MCZ, näo-examinados); BrIGNOLI, 1983:556.

Diagnose. Abapeba grassima difere de A. taruma pelo palpo do macho com

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

74 BONALDO

projeção tegular subapical retrolateral pequena; êmbolo curto, de inserção apical (figs.

203, 204); epígino com abertura de copulação mediana, de margem posterior procurva

(fig. 205).

Descrição. Macho (Balboa, Zona do Canal, Panamá). Carapaça castanho-

avermelhada escura, peças bucais e esterno castanho-avermelhados, fêmures castanhos

com uma faixa longitudinal amarela retrolateral e manchas amarelas alongadas dorsais;

patelas amarelas manchadas de castanho; tíbias castanhas com faixa longitudinal dorsal

e ápice amarelos; metatarsos amarelos manchados de castanho; tarsos amarelos; dorso

do abdômen violáceo-escuro, salpicado de amarelo; ventre amarelo com faixa longitudinal

violácea pouco definida.

Comprimento total 5,2. Carapaça: comprimento 2,5, largura 2,2, altura 1,05; clípeo, altura 0,15. Olhos:

fila anterior 0,82, posterior 1,0; QOM: comprimento 0,35, largura anterior 0,4, largura posterior 0,67; diâmetros:

OMA 0,17, OLA 0,17, OMP 0,13, OLP 0,13; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

0,2, OMP-OLP 0,2, OLA-OLP 0,05. Quelíceras: comprimento 1,35; retromargem com 4 dentes iguais separados.

Esterno: comprimento 1,35, largura 1,35. Abdômen: comprimento 2,6, largura 1,7. Pernas: comprimento relativo

4123. 1- fêmur 2,0/ patela 1,0/ tíbia 1,7/ metatarso 1,6/tarso 1,1/total 7,4; II - 1,7/0,9/1,3/1,4/0,9/6,2; HI - 1,5/

0,8/1,1/1,2/0,8/5,4; TV - 2,2/0,9/1,9/2,1/1,1/8,2. Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v 1r-2-2-2; metatarso

v2-2. 11 - fêmur dl-1;tibia vIr-Ir-1r-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-0-1,r0-0-1:; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-

2: metatarso p1-0-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-0-1, r0-0-1; tíbia pl-1, r1-1, vlp-2-2; metatarso p1-1-0, r0-1-

1, v2-2-1. Palpo: figs. 187, 203, 204.

Fêmea (Balboa, Zona do Canal, Panamá). Coloração como no macho.

Comprimento total 6,0. Carapaça: comprimento 2,7, largura 2,2, altura 1,1; clípeo, altura 0,15. Olhos:

fila anterior 0,87, posterior 1,02; QOM: comprimento 0,38, largura anterior 0,43, largura posterior 0,42: diâmetros:

OMA 0,17, OLA 0,15, OMP 0,12, OLP 0,12; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,2, OMP-OLP 0,25, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,3; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 1,4, largura 1,35. Abdômen: comprimento 3,1, largura 2,0. Pernas: comprimento relativo como no

macho. I - fêmur 2,1/patela 1,0/ tíbia 1,7/ metatarso 1,5/tarso 1,1/total 7,4; IT - 1,8/0,9/1,4/1,3/0,9/6,3; HH - 1,6/

0,8/1,2/1,3/0,8/5,7; IV - 2,3/1,0/2,0/2,1/1,1/8,5. Espinulação: I- fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia vlr-2-2-2: metatarso

v2-2. II- fêmur dl-1; tíbia vIr-Ir-1r-2; metatarso v2-2. HI - fêmur d1-0-1, p0-0-1,r0-0-1; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-

2; metatarso p0-1-1, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-0-1, r0-0-1; tíbia, pl-1,r1-1, vlp-1p-2: metatarso p0-1-1,r1-1-

1, v2-2-1. Epígino: figs. 205, 206.

Variação. Comprimento: (10 &) total 4,8-5,7, carapaça 2,3-2,9, fêmur I 1,9-2,3; (10 9) total 5,0-6,5,

carapaça 2,3-3,0, fêmur I 1,9-2,3. As pernas III e IV, regeneradas, de um exemplar da Cidade do Panamá, são

amarelas; alguns machos não apresentam scutum dorsal no abdômen; a projeção subapical retrolateral do tégulo

do palpo varia em grau de esclerotinização; nas fêmeas, varia a distância entre a abertura de copulação e a borda

posterior do epígino; as espermatecas secundárias podem ser assimétricas.

Distribuição geográfica. Panamá.

Material examinado. PANAMÁ. Colón: Santa Rosa,S, 39, IX.1945, C. D. Michener (AMNH); Gatun,

0,9, 15.X1.1958, A.M. Chickering (MCZ); Panamá: Canal Zone Forest Preserv, S, 21.X1.1958, A. M. Chickering

(MCZ); Old Panamá City, 3d, 39, j, 28.VII.1945, Michener & Fichter (AMNH, MCN 28313); Balboa, 136, 6

2,7), V. 1964, A.M. Chickering (MCZ);9, 28.X1.1954, W. E. Lundy (AMNH); La Campana, &, j, 05. VIIL.1945,

E. Fichter (AMNH).

Abapeba taruma sp. nov.

(Figs. 207-210)

Holótipo 4, Igapó Tarumã-Mirim, Manaus, Amazonas, Brasil, 18.X1.1982, J.

Adis (INPA).

Etimologia. O nome específico é um substantivo em aposição, em referência à

localidade-tipo.

Diagnose. Abapeba taruma difere de A. grassima pelo palpo do macho com

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 75

Figs. 203-210. Abapeba grassima (Chickering): 203, palpo, ventral; 204, palpo, retrolateral; 205, epigino, ventral;

206, epígino, dorsal; Abapeba taruma sp. nov.: 207, palpo, ventral; 208, palpo, retrolateral; 209, epigino, ventral;

210, epígino, dorsal. Todas as figuras na mesma escala (barra, 0,25 mm).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

76 BONALDO

projecäo tegular subapical retrolateral ampla; &mbolo relativamente longo, de insergäo

subapical (figs. 207, 208); epigino com abertura de copulação posterior, de margem

posterior recurva, em “V” (fig. 209).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaga e peças bucais castanho-avermelhadas

claras, esterno castanho-amarelado, pernas amarelas, abdômen cinza-claro, dorso com

manchas esparsas cinza-escuro.

Comprimento total 7,5. Carapaça: comprimento 3,4, largura 2,6, altura 1,4; clípeo, altura 0,35. Olhos: fila

anterior 0,95, posterior 1,15; QOM: comprimento 0,35, largura anterior 0,52, largura posterior 0,5; diâmetros: OMA

0,23, OLA 0,15, OMP 0,12, OLP 0,1: interdistäncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP 0,2, OMP-

OLP 0,35, OLA-OLP 0,05. Quelíceras: comprimento 1,7; retromargem com 5 dentes, 4º maior, bífido. Esterno:

comprimento 1,6, largura 1,6. Abdômen: comprimento 3,3, largura 2,4. Pernas: comprimento relativo 4123. I -

fêmur 2,7/ patela 1,2/tíbia 2,2/ metatarso 2,2/tarso 1,1/ total 9,4; II - 2,6/1,1/2,0/2,0/1,0/8,7; HI - 2,4/1,1/1,8/2,2/

0,9/8,4; IV - 2,8/1,3/2,3/2,9/1,1/10,4. Espinulagäo: I - fêmur d0-0-1, p0-0-1: tíbia v1p-2-2-2-2; metatarso v2-2. II -

tíbia v0-2-2-2: metatarso p0-1-0, v2-2. II - fêmur d0-0-1; tíbia r0-1-1, v0-0-2: metatarso p0-1-0,70-1-1, v2-2-1. IV

- fêmur d0-0-1:; tíbia r0-1-1, v0-0-2: metatarso p0-1-0, r0-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 207, 208.

Fêmea (parátipo). Coloração como no macho, exceto pernas amarelo-escuras,

abdômen cinza-escuro, dorso com mancha amarela mediana em “V” invertido e mancha

amarela em “M” posterior.

Comprimento total 7,8. Carapaça: comprimento 3,2, largura 2,6, altura 1,2: clípeo, altura 0,4. Olhos: fila

anterior 0,97, posterior 1,07; QOM: comprimento 0,37, largura anterior 0,5, largura posterior 0,5: diâmetros:

OMA 0,18, OLA 0,15, OMP 0,12, OLP 0,12; interdistâncias: OMA-OMA 0,15, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP

0,2, OMP-OLP 0,25, OLA-OLP 0,05. Queliceras: comprimento 1,5; retromargem com 4 dentes, 4º maior, bifido.

Esterno: comprimento 1,6, largura 1,55. Abdômen: comprimento 3,9, largura 2,6. Pernas: comprimento relativo

como no macho. I - fêmur 2,6/ patela 1,2/tíbia 2,1/ metatarso 2,2/tarso 0,9/ total 9,0; II - 2,4/1,1/1,8/2,0/0,8/8,1;

III - 2,1/1,0/1,6/2,1/0,7/7,5; IV - 2,7/1,1/2,2/2,8/0,9/9,7. Espinulação: I - fêmur d0-0-1, p0-0-1; tíbia v 1p-2-2-2-

2; metatarso v2-2. II - fêmur d0-0-1; tíbia v0-2-2-2: metatarso p0-1-0, v2-2. III - fêmur d0-0-1; tíbia vO-0-2;

metatarso p0-1-0, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d0-0-1, r0-0-1; tíbia v0-0-2: metatarso p0-1-0, r0-1-1, v2-2-1. Epígino:

figs. 209, 210.

Variação. Comprimento: (80) total 5,0-7,0, carapaça 2,5-3,3, fêmur I 2,0-3,0; (39) total 5,7-6,9, carapaça

2,1-3,0, fêmur 1 2,2-2,6. Alguns machos apresentam o mesmo padrão de colorido da fêmea descrita.

Distribuição geográfica. Amazônia brasileira.

Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Amazonas: Manaus (INPA), S;, 30.V.1986, J. Adis et al. (INPA);

(Reserva Florestal Adolpho Ducke), 2, 23.X.1990, F. Apolinario (INPA); &, 28.X1.1993, &, 07.11.1994, C.

Martius (INPA); (Igapó Taruman-Mirim), 26, 16.VII.1976 (MEN, SMNK); 29, 12.V1.1981, J. Adis (INPA):S,

01.1V.1985, J. Adis (INPA); (Ilha da Marchantaria), &, 22.1V.1986, C. Martius (INPA); Pará: Rio Marituba, O,

19.11.1964, C. E. & E. S. Ross (CAS).

Falconina Brignoli, revalidado

Falconia SCHENKEL, 1953:46 (espécie-tipo por designação original e monotipia, Falconia melloi Schenkel, 1953);

BricnoLI, 1983:552; sinonimizado comCorinna por MULLER & HEMER, 1988:153. Nome feminino.

Falconina BricnoLI, 1985:380 (nomem novum para Falconia Schenkel, pré-ocupado por Falconia Distant,

1884, Hemiptera);PLATNICK, 1989:446. Nome feminino.

Diagnose. Palpo do macho com ATR bilobada, PV presente; címbio com PCr

bem desenvolvido; projeção tegular (PTF) ventral laminar, de inserção mediana;

êmbolo espiniforme, com um processo basal (figs. 101, 211, 216, 223). Epígino

com uma abertura de copulação, posicionada sob uma dobra da superfície do epígino,

que forma uma grande placa anterior provida de depressão mediana (figs. 213,

221); vulva com PVP desenvolvida, provida de extensões fusionadas às espermatecas

primárias (figs. 214, 222).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 4,6-8,9. Carapaça suboval,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... Ti

mais longa que larga; praticamente glabra, com poucas cerdas eretas, concentradas

na região cefálica e granulações esparsas muito finas; maior largura entre as coxas

II e III, maior altura sobre a inserção do palpo. Região cefálica pouco demarcada,

estreitamento pouco acentuado, margem anterior sub-reta, tubérculo interocular

inconspícuo (fig. 215); região torácica gradualmente rebaixada nos machos, algo

mais abruptamente nas fêmeas; sulco torácico pouco profundo, curto, menor que o

comprimento do QOM; margem posterior reta ou com invaginação mediana muito

suave. Clípeo com um e meio a dois diâmetros do OMA. Fila de olhos anteriores

fortemente procurva; fila de olhos posteriores procurva; QOM tão longo quanto

largo, subquadrado, largura anterior igual a posterior; cômoro ocular lateral pouco

conspícuo. Olhos médios circulares, laterais subovais; olhos subiguais em tamanho,

OMA pouco maiores. Interdistâncias: OMA-OMA separados por menos de um

diâmetro; OMA-OLA subcontíguos; OMP-OMP por cerca de um diâmetro; OMP-

OLP por cerca de um diâmetro e meio dos OMP; OLA-OLP subcontíguos. Chilum

dividido, liso, glabro. Quelíceras pequenas, pouco geniculadas, menores que a metade

do comprimento da carapaça; face frontal finamente granulada; retrolateral com

estrias conspícuas; côndilo basal subtriangular; retromargem do sulco subungueal

com de 4 a 6 dentes separados; garra com cerca de um terço do comprimento das

queliceras. Enditos convergentes, promargem levemente côncava em F. meloi, reta

em F. gracilis. Lábio mais largo que longo, com cerca da metade do comprimento

dos enditos. Esterno mais longo que largo, com poucas cerdas fortes eretas e muitos

pêlos inseridos em tubérculos; rebordo conspícuo; laterais da margem anterior

projetadas; escavações esternais ausentes.

Pernas longas e delgadas, relativamente hirsutas, com cerdas longas e grossas e

pélos plumosos, alguns dos quais pouco ramificados (figs. 41, 42); comprimento relativo

4123. Coxas com poucos pêlos inseridos em tubérculos. Tíbia I com 4 a6 pares de

espinhos ventrais; metatarso I com 2 pares de espinhos ventrais. Escópulas tarsais ralas,

restritas aos tarsos Ie II (fig. 36), nos tarsos III e IV substituídas por cerdas espiniformes

(fig. 38); metatarsos sem escópulas, III e IV com tufo de cerdas ventro-distais conspicuo

(fig. 37); unhas tarsais com poucos dentes curtos; tufo de pêlos subungueais denso, com

pêlos curtos; tricobótrias tarsais distribuídas em uma fila; órgão tarsal subapical (fig.

63); unha do tarso do palpo da fêmea com poucos dentes curtos; trocanteres I e II não-

recortados, III e IV levemente recortados.

| Abdômen geralmente piloso, com cerdas eretas esparsas e pêlos plumosos ou

“Simples; scutum dorsal presente apenas nos machos, pouco definido, restrito à metade

| anterior (fig. 215); scutum ventral ausente em ambos os sexos; tubérculo traqueal ausente.

Cólulo representado por uma placa subquadrangular coberta por pêlos simples.

| Palpo do macho. Tíbia longa, maior que a metade do comprimento do címbio;

“ATR bilobada, PV presente (figs. 211, 216); em E gracilis, ATR com processos dispostos

“entre os lobos ventral e dorsal (figs. 227-220, 223-225). Címbio com PCr muito

desenvolvido, esculturado (fig. 223); PCp ausente. Subtégulo inteiro; fundus não-

“alargado, no tégulo. Ápice do PTd em gancho (fig. 101); PTF laminar, muito

“desenvolvido, com laterais côncavas em F. melloi (figs. 211, 212), menos desenvolvido

em E gracilis (fig. 101, 216). Condutor hialino; êmbolo espiniforme, com um processo

basal (PEF) pouco desenvolvido, prolongado retrolateralmente em E melloi (fig. 211) e

muito desenvolvido, prolongado prolateralmente, com o ápice apoiando o ápice do êmbolo

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

78 BonaLDO

em F. gracilis (figs. 216, 228). Epígino projetado sobre o sulco epigástrico em E gracilis

(fig. 221), não-projetado em E melloi (fig. 213), provido de uma depressão mediana;

uma abertura de copulação, encoberta por uma placa ventral esclerotinizada, formada

por uma dobra da superfície do epígino; vulva com PVP bem desenvolvida, com um par

de extensões conectadas às espermatecas primárias; espermatecas secundárias globulares,

menores que as primárias (figs. 214, 222).

Elenco. Quatro espécies:

Falconina albomaculosa (Schmidt), comb. nov. - Equador.

Corinna albomaculosa SCHMIDT, 1971 (holótipo SMF, examinado).

Falconina crassipalpis (Chickering), comb. nov. - Panamá.

Corinna crassipalpis CHICKERING, 1937 (tipos MCZ, não-examinados).

Falconina gracilis (Keyserling), comb. nov. (pág. 79).

Falconina melloi (Schenkel), comb. restaur. (pág. 78).

Falconina melloi (Schenkel), comb. restaur.

(Figs. 211-214)

Falconia melloi SCHENKEL, 1953:46, figs. 40a-c (holótipo S, El Pozon, Fälcon, Departamento Acosta, Venezuela,

Windenmeyer, MHNB 2252-a, examinado); BriGNoLI, 1983:552.

Falconina melloi; BRIGNOLI, 1985:380.

Corinna melloi; MÜLLER & HEIMER, 1988:155, figs. 1-9: PLATNICK, 1993:619.

Diagnose. Machos de Falconina melloi diferem dos de F. gracilis pelo PV da

ATR longo, filiforme; PTF muito desenvolvido, subquadrangular, de bordas laterais

convexas e ápice encobrindo a base do êmbolo; PEF pouco desenvolvido, com projeção

prolateral pequena, espiniforme (figs. 211, 212). Fêmeas diferem pelo epígino com

depressão mediana ampla, posicionada anteriormente e pela borda posterior da placa

ventral sub-reta, afastada da borda posterior do epígino (fig. 213).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça castanho-avermelhada, mais escura na

região cefälica; queliceras, enditos e lábio castanho-avermelhados escuros; esterno

amarelo, bordas castanhas; pernas amarelas, com fêmures manchados de castanho; dorso

do abdômen cinza-violáceo claro, com um par de manchas brancas anteriores, uma

faixa branca transversal mediana e uma mancha posterior branca; ventre amarelo-claro,

com o terço posterior cinza-violáceo.

Comprimento total 7,2. Carapaça: comprimento 2,9, largura 2,15, altura 1,25; clípeo, altura 0,32. Olhos:

fila anterior 0,9, posterior 1,1; QOM: comprimento 0,47, largura anterior 0,52, largura posterior 0,52: diâmetros:

OMA 0,22, OLA 0,2, OMP 0,17, OLP 0,18; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,2, OMP-OLP 0,2, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,5; retromargem com 6 dentes separados, o primeiro

menor. Esterno: comprimento 1,5, largura 1,3. Abdômen: comprimento 4,0, largura 2,0. Pernas: comprimento

relativo 4123. I - fêmur 2,7/ patela 1,0/ tíbia 2,4/ metatarso 2,4/ tarso 2,0/ total 10,5; II - 2,3/0,9/2,0/2,15/1,7/

9,05; III - 2,2/0,9/1,75/2,3/1,45/8,6; IV - 3,0/1,0/2,6/3,25/1,7/11,55. Espinulagäo: I - fêmur dI-1, p0-0-1: tíbia

vlp-2-2-2-2; metatarso v2-2. II- fêmur dl-1, p0-0-1: tíbia v2-2-2-0; metatarso v2-2. II - fêmur dl-1-1, p0-1-1,

r0-1-1: tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-0-1; tíbia pl-1,

rl-1, v2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 211, 212.

Fêmea (Vila Culebra, Santa Marta). Coloração como no macho, exceto dorso do

abdômen com um par de manchas quadrangulares medianas.

Comprimento total 6,5. Carapaça: comprimento 2,8, largura 2,1, altura 1,22; clípeo, altura 0,25. Olhos:

fila anterior 0,85, posterior 1,0; QOM: comprimento 0,4, largura anterior 0,5, largura posterior 0,5; diâmetros:

OMA 0,22, OLA 0,15, OMP 0,15, OLP 0,15; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 79

0,2, OMP-OLP 0,2, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,3; retromargem com 4 dentes iguais, separados.

Esterno: comprimento 1,47, largura 1,25. Abdômen: comprimento 3,65, largura 2,2. Pernas: comprimento relativo

4123. 1- fêmur 2,4/ patela 0,9/ tíbia 2,25/ metatarso 2,2/tarso 1,95/ total 9,7; II - 2,2/0,85/1,8/1,95/1,6/8,4; HI

- 2,0/0,85/1,5/2,15/1,45/7,95; IV - 2,75/0,9/2,35/3,15/1,7/10,85. Espinulação: I - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia vlp-

2-2-2-2: metatarso v2-2. II - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia v2-1p-2-2: metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-1-

1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-0-1; tíbia pl-1,rl-1,

v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epigino: figs. 213, 214.

Variação. Comprimento: (26) total 4,9-5,2, carapaça 2,5-2,6, fêmur 12,3- 2,4; (59) total 5,5-6,9, carapaça

2,4-2,95, fêmur I 2,2-2,4. Em alguns exemplares a faixa transversal mediana do dorso do abdômen é dividida,

formando um par adicional de manchas quadrangulares; as manchas anteriores podem estar conectadas à faixa

transversal mediana por um par de faixas laterais longitudinais.

Distribuição geográfica. Venezuela e norte da Colômbia.

Material examinado. VENEZUELA. Bolivar: 35 Km Porto Orda 2,26, 13.VII-02.VI11.1987, S. & J.

Peck (AMNH); COLÔMBIA. Magdalena: Bahia de Gairaca (Tayrona Park, 20 Km NE Santa Marta), &, 3,

12.V11.1985, H. G. Müller (SMF 35640); Villa Culebra (Bonda, 10 Km E Santa Marta), 59, XI-XII.1985, H. G.

Miiller (SMF 35641).

Falconina gracilis (Keyserling), comb. nov.

(Figs. 36-38, 41, 42, 63, 101, 215-228)

Hypsinotus gracilis KEYSERLING, 1891:56, pr. 2, fig. 29 (holótipo 9, Rio Grande do Sul, Brasil, BMNH 1890.7.1/

1243, examinado).

Corinna stigmatica Simon, 1897c:8 (holótipo 2, Colonia Risso, Paraguai, MNHN, não-encontrado, provavelmente

perdido); PETRUNKEVITCH, 191 1:498; RogwER, 1954:600. Syn. nov.

Corinna stigmatisata; Simon, 1898:193; Bonner, 1956:1216 (ementa injustificada).

Corinna gracilis; PETRUNKEVITCH, 191 1:466; MeLLO-LEITÃO, 1923a:55; ROEWER, 1954:597; Bonner, 1956:1211.

Corinna vertebrata MerLo-LeIrÃo, 1939b:82, figs. 70, 71 (holótipo 2, Capito Punto, Paraguai, Ternetz, MHNB

1190a, examinado); 1940:54, pr.l, fig. 2; 1941:176, fig. 67; RoewEr, 1954:601; Bonner, 1956:1217.

Sinonimizado com Corinna stigmatica Simon porMELLO-LeITÃO, 1945:222.

Corinna cribosa MELLo-LEITAo, 1942:417, fig. 42 (holótipo 92, Resistencia, Chaco, Argentina, XI.1939, M.

Birabén, MLP 15540, examinado): RogwERr, 1954:596; ARROZPIDE, 1986:17.Syn. nov.

Nota. A sinonímia de Corinna stigmatica com Falconina gracilis foi baseada no

exame do holótipo de Corinna vertebrata. As descrições originais e mesmo a procedência

dos holótipos destas duas espécies sugerem que foi correta a sinonímia deC. vertebrata

com €. stigmatica, efetuada por MELLo-LEITAo (1945).

Diagnose. Machos de Falconina gracilis diferem dos de E melloi pelo PV da

ATR curto, espiniforme; PTF pequeno, subtriangular, de bordas laterais retas e ápice

não-encobrindo a base do êmbolo; PEF muito desenvolvido, com extensão prolateral

“convergindo ao ápice do êmbolo (figs. 216, 217, 223, 228); fêmeas diferem pelo epígino

“com depressão mediana pequena, posicionada posteriormente e pela borda posterior da

“placa ventral procurva, próxima da borda posterior do epígino (fig. 221).

| Descrição. Macho (Chaco, Argentina). Carapaça e quelíceras castanho-escuras,

enditos e lábio castanho-avermelhados; esterno castanho-avermelhado, bordas castanho-

escuras; pernas amarelas manchadas de castanho; dorso do abdômen cinza-violáceo

claro, com faixa longitudinal branca no terço anterior, dois pares de manchas brancas

medianas e uma mancha branca no terço posterior; ventre amarelo-claro.

Comprimento total 5,4. Carapaça: comprimento 2,5, largura 1,9, altura 0,9: clípeo, altura 0,3. Olhos: fila

anterior 0,77, posterior 0,92: QOM: comprimento 0,42, largura anterior 0,42, largura posterior 0,42; diâmetros:

OMA 0,17, OLA 0,15, OMP 0,12, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

0,2, OMP-OLP 0,17, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,25; retromargem com 5 dentes subiguais,

separados. Esterno: comprimento 1,4, largura 1,25. Abdômen: comprimento 2,7, largura 1,6. Pernas: comprimento

relativo 4123. 1 - fêmur 2,1/ patela 0,9/ tíbia 1,9/ metatarso 1,7/tarso 1,4/ total 8,0; II - 1,9/0,7/1,5/1,6/1,3/7,0; HI

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

80 BONALDO

Figs. 211-222. Falconina melloi (Schenkel): 211, palpo, ventral; 212, palpo, retrolateral; 213, epigino, ventral;

214, epigino, dorsal. Falconina gracilis (Keyserling): 215, macho, cefalotörax e abdömen, dorsal; 216, palpo,

ventral; 217 palpo, retrolateral (Paraguai); 218, tibia, retrolateral (Natal, Rio Grande do Norte); 219, tibia,

retrolateral (São José do Rio Preto, São Paulo); 220, tíbia, retrolateral (Las Tumanas, San Juan); 221, epígino,

ventral; 222, epigino, dorsal. Abreviaturas: PEF, processo embolar de Falconina; PTF, processo tegular de

Falconina. Figs. 211-214; 216-222 (barra, 0,25 mm); 215 (barra, 1 mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

axonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 81

- 1,6/0,7/1,4/1,6/1,1/6,4; IV - 2,3/0,9/2,0/2,6/1,4/9,2. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2-2;

metatarso v2-2. II - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-1-1; tíbia dl-

1,p1-1, r0-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1, r0-0-1; tíbia dl-1, pl-1,rl-1,

v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 216-220; 223-228.

Fêmea (Chaco, Argentina). Coloração como no macho, exceto ventre cinza-violäceo

claro.

Comprimento total 7,4. Carapaça: comprimento 2,7, largura 2,2, altura 0,9; clípeo, altura 0,25. Olhos: fila

anterior 0,85, posterior 1,0; QOM: comprimento 0,42, largura anterior 0,45, largura posterior 0,45; diâmetros:

OMA 0,18, OLA 0,17, OMP 0,15, OLP 0,15; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,25, OMP-OLP 0,22, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,5; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 1,5, largura 1,4. Abdômen: comprimento 4,8, largura 2,7. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 -

fêmur 2,5/ patela 1,1/ tíbia 2,1/ metatarso 1,9/ tarso 1,4/ total 9,0; II - 2,4/0,9/1,8/1,7/1,3/8,1; II - 2,0/0,9/1,5/

1,9/1,2/7,5; IV - 2,7/1,0/2,3/3,0/1,5/10,5. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2-2; metatarso v2-

2. I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-1-1; tíbia dl-1, pl-1,

rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,rl-1-1,v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-0-1; tíbia dl-1, pl-1,r1-1, v2-2-2;

metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 221, 222.

Variação. Comprimento: (10 &) total 4,6-6,4, carapaça 2,0-3,1, fêmur I 1,8- 2,5; (106) total 5,9-8,9,

carapaça 2,5-3,1, fêmur I 2,1-2,7. Em alguns exemplares o fêmur I é mais escuro que os demais; o dorso do

abdômen pode apresentar-se uniforme, sem padrão de colorido; a faixa longitudinal branca no terço anterior é, nos

machos, encoberta pelo seutum (fig. 215) e pode ser larga e fusionada às manchas brancas medianas; em poucos

espécimes ocorre apenas um par de manchas brancas medianas. Na ATR do palpo do macho, a disposição e a

forma dos processo localizados entre os lobos ventral e dorsal variam consideravelmente (figs. 217-220, 223-

225); a região apical dorsal do PCr também varia (figs. 226, 227); em algumas fêmeas, a placa ventral do epígino

“é alongada, com borda posterior arredondada.

Distribuição geográfica. Sudoeste dos Estados Unidos (provavelmente introduzida),

Brasil, Paraguai, norte da Argentina.

| Material examinado. ESTADOS UNIDOS. Texas: Brazos Co. (College Station), &, 15.1.1987, C. W.

Agnew (AMNH):9, 03.X1.1988, S. Ellison (AMNH); Travis Co. (Five Pocket Cave), 2, 22.X.1993, K. Fraiser

(CPC); 2, Houston, 30.1X.1957 (AMNH); Louisiana: Pearl River (St. Tammany), 3 &, 4 9 (AMNH); S, 9,

20.V1.1998, Z. Lemann (AMNH); New Orleans (Lousiana Nature Center), 46, 29, 09,25 1X.1981. G. Walker

(AMNH); O, 14.X.1981, G. Walker (AMNH); Mississippi: Hancock Co., Bay Saint Louis, 9, 22.V.1982, W. H.

Cross (AMNH). BRASIL. Piauí: 10 Km N Corrente (Fazenda Maracujá), &, 23-27.X1.1991,S. T. P. Amarante &

€. F. Martins (MZSP); Rio Grande do Norte: Natal, &, 1951, M. Alvarenga (MZSP 7467); Pernambuco:

Santa Terezinha (Poço Redondo),S, 26.1V.1978, P. F. L. Duarte (UFPB); Bahia: entre Feira de Santana e Serrinha,

&, VII. 1948 (MNRJ 13217); Mato Grosso do Sul: Paranaíba, S, VII.1983, R. R. da Silva (IBSP 6775); Jupiá,

&, 16.1X.1962, Exp. Dept. Zool. (MZSP 12570); Três Lagoas (Rio Sucurí),S, 1966, F. Lane (MZSP 5433); Rio

de Janeiro: Bom Jesus do Itabapoana, ?, 06.V.1996, R. L. C. Baptista (CRB 3493); Itaipava, 9, 11.1988, R.L.C.

Baptista (CRB 2265); Barra do Piraí, S, 09.1V.1995, E. H. Wiewskoski (CRB 2766); Maricá,9, X.1987, R.L.€.

Baptista (CRB 1919); Campos, S,9, 19.1X.1995, A. Tonhasca (IBSP); São Paulo: Itapuera (Ilha Seca, rio Tiete),

9, 20.11.1940, Mogin & Berta (MZSP 12566); São José do Rio Preto, &, 16.VIII.1968, Biazi & Vizoto (MZSP

12568); Castilho, 2, 27.X1.1964, K. Lenko (MZSP 12565); Urupês, S, 16.VIII.1968, Taddei (MZSP 12564);

Jaboticabal, 30°, 1979, W. & L. Miller (MCZ); Botucatú, S, 20.V.1981, P.F L. Duarte (UFPB); Rodovia Fernão

Dias (Km 53), 9, 2, 1. 1991, L. Borimecico (IBSP 4063); Paraná: Santa Helena (Refúgio Biológico de Santa

Helena), &, 21.1.1991, A. B. Bonaldo (MCN 20961); Rio Grande do Sul: Santa Maria, 2, 01.VI.1982 (MCN

12005); Porto Alegre (Jardim Botänico),?, j, 11.XI.1994, A. B. Bonaldo (MCN 25141). BOLÍVIA. Santa Cruz:

Estación El Portón, S, 24.1X.1955, C. Sincole (CAS). PARAGUAI. Asunción, 26, 15.1X.1956, C. J. D. Braun

(MCZ); Hernanderias (Hidroelétrica de Itaipú), &, 06.X1.1988 (MHCI). ARGENTINA. Salta: Tartagal, O,

X1.1971, Fritz (MACN); Juramento, S (MNRJ 117); Cabeza de Buey, &, 2,3, 03.V.1964, C. E. & E. S. Ross

(CAS); Chaco: Sáenz Pera, 9, IX.1982, Ganhaser (MACN 31336); Parque Nacional del Chaco (1000 Km NW

Resistencia), 29, 2, 12-17.X11.1990, S. & J. Peck (AMNH); Resistencia, 29, X.1942 (MACN); Santiago del

Estero: 70 Km W Santiago del Estero, &, 03.1V.1965, M. Levi (MCZ); 5 km W Paso Beheder, 9, 27.VIII.1971

(MACN); Misiones: Parque Nacional del Iguazú (Cantera), 5&, 08.XI1.1990, S. & J. Peck (AMNH); Porto 17

de Octubre, 36, 3], X.1953, Exp. De Carlo-Schiapelli-Vianna-Galiano (MACN 3820); San Juan: Las Tumanas

(20 Km S Valle Fertil), 2S, 6 j, 14.1V.1979, A. Roig (MACN); Córdoba: Agua de Oro, 29, III.1940, A. J. De

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

82 BONALDO

Figs. 223-228. Falconina gracilis (Keyserling): 223, apöfise tibial retrolateral e processo cimbial basal (Parque

Nacional del Iguazú, Misiones); 224, processo espiniforme da apófise tibial retrolateral (Pear River, Louisiana);

225, idem (sem procedência); 226, ápice do processo cimbial retrolateral (Parque Nacional del Iguazú, Missiones);

227, ídem (sem procedência): 228, ápice do bulbo, retrolateral. Abreviaturas: C, condutor; E, êmbolo; LD, lobo

dorsal da apófise tibial retrolateral; LV, lobo ventral da apófise tibial retrolateral; PCr, processo cimbial basal

retrolateral; PEF, processo embolar basal de Falconina; PTF, processo tegular de Falconina; PV, processo ventral

da apófise tibial retrolateral.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 83

Carlo (MACN); San Luiz: Merlo,Q‘, X1.1971, Willineu (MACN); Buenos Aires: Pigiié (El Eroperón),S, 24.XI.,

Maury (MACN); Las Espadanas (9 Km W Serra de la Ventana), &, 3 j, X.1973, Maury & Cesaz (MACN).

URUGUAI. Canelones: Villa Argentina, ?, 08.11.1970, R. Capocasalle (CAS).

Septentrinna gen. nov.

Espécie-tipo. Corinna bicalcarata Simon.

Etimologia. O nome genérico, feminino, vem da reunião das palavras

septentrionis, norte em latim, e Corinna, em alusão à distribuição geográfica das espécies

do grupo da espécie-tipo.

Diagnose. Palpo do macho com ATR bilobada, com ou sem PV e com uma projeção

mediana posicionada entre os lobos ventral e dorsal (PMS); címbio com PCr bem

desenvolvido; processo tegular (PTS) paralelo ao êmbolo, de inserção apical e ápice

bífido; êmbolo lamelar (figs. 230, 235, 238-240, 242, 248). Epígino com uma abertura

de copulação anterior e uma bolsa ventral de abertura posterior (BES) (figs. 232, 236,

244, 249).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 4,1-8,6. Carapaça suboval, pouco

mais longa que larga no grupo bicalcarata e nitidamente mais longa que larga no grupo

yucatan; superfície quase glabra, com cerdas eretas esparsas e abundantes granulações

finas; maior largura sobre as coxas II, maior altura sobre a inserção do palpo. Região

cefálica não-delimitada, estreitamento pouco acentuado; margem anterior pouco convexa,

quase reta, tubérculo interocular pouco conspícuo (fig. 229); região torácica gradualmente

rebaixada; sulco torácico profundo, curto, menor que o comprimento do QOM no grupo

yucatan e longo, maior que o comprimento do QOM no grupo bicalcarata; margem

posterior reta, sem invaginação mediana. Clípeo pouco maior que um diâmetro dos

_ OMA no grupo yucatan, com cerca de dois diâmetro dos OMA no grupo bicalcarata.

Fila de olhos anteriores procurva; fila de olhos posteriores levemente procurva; QOM

mais largo que longo, largura anterior aproximadamente igual à largura posterior; cômoro

ocular lateral inconspícuo. Olhos médios e laterais posteriores circulares, laterais

anteriores subovais; OMA pouco maiores que os demais no grupo bicalcarata e

nitidamente maiores que os demais no grupo yucatan. Interdistâncias: OMA-OMA

separados por menos de um diâmetro; OMA-OLA por menos de meio diâmetro dos

OMA; OMP-OMP por um e meio a dois diâmetros; OMP-OLP por cerca de um diâmetro

e meio dos OMP; OLA-OLP subcontíguos. Chilum dividido, liso, glabro. Quelíceras

menores que a metade do comprimento da carapaça, pouco geniculadas; face frontal

com granulações finas; retrolateral com estrias transversais conspícuas (fig. 15); côndilo

basal subtriangular; retromargem do sulco subungueal com 4 dentes no grupo bicalcarata

e 5 no grupo yucatan; garra com cerca de um terço do comprimento das quelíceras.

Enditos convergentes, promargem reta, retromargem pouco escavada; lábio pouco mais

largo que longo, com cerca da metade do comprimento dos enditos. Esterno pouco mais

longo que largo no grupo yucatan, aproximadamente tão longo quanto largo no grupo

bicalcarata; relativamente hirsuto, com pêlos inseridos em tubérculos; rebordo nítido;

laterais da margem anterior projetadas; escavações esternais ausentes.

Pernas longas e delgadas, pilosas, com abundantes cerdas grossas, pêlos simples

e pêlos plumosos com poucas ramificações (fig. 43); comprimento relativo geralmente

4123, exceto no macho de S. bicalcarata, 1423. Coxas com pêlos não-inseridos em

tubérculos. Tíbia I com 4 a 5 pares de espinhos ventrais e geralmente com um espinho

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

84 BONALDO

ímpar proximal; metatarso I com 2 pares de espinhos ventrais. Escópulas ralas, restritas

aos tarsos Ie II; nos tarsos III e IV, substituídas por cerdas espiniformes; metatarsos sem

escópulas, Il e IV com tufo de cerdas ventro-distais inconspícuo; unhas tarsais pectinadas,

com poucos dentes curtos; pêlos subungueais densos; tricobótrias tarsais (fig. 64) |

distribuídas em duas filas; órgão tarsal subapical; unha do tarso do palpo da fêmea com

poucos dentes muito pequenos; trocanteres não-recortados.

Abdômen piloso, com abundantes cerdas longas eretas e pêlos simples e plumosos;

pigmentado no grupo yucatan (fig. 246), não-pigmentado no grupo bicalcarata (fig. 229);

scutum dorsal apenas nos machos do grupo yucatan, pouco definido e restrito ao terço

anterior; ausente em todas as fêmeas e nos machos do grupo bicalcarata; seutum ventral

e tubérculo traqueal ausentes. Cólulo representado por uma placa subquadrangular hirsuta.

Palpo do macho. Tíbia menor que a metade do comprimento do címbio no grupo

bicalcarata (figs. 230, 234), mais alongada, com cerca da metade do comprimento do

címbio no grupo yucatan (figs. 242, 247); ATR bilobada, com uma projeção mediana

entre os lobos ventral e dorsal (PMS, figs. 231, 243, 248); PV ausente no grupo

bicalcarata (figs.104, 231) e presente, subapical, no grupo yucatan (figs. 105, 238)

ramo dorsal da ATR mais desenvolvido do que o ventral no grupo bicalcarata; menos

desenvolvido do que o ventral no grupo yucatan. Címbio com PCr desenvolvido,

esculturado; PCp ausente (figs. 104, 105, 230, 242). Subtégulo inteiro; fundus não-

alargado, no tégulo; PTd com ápice dobrado em gancho (figs. 104, 105); tégulo com

PTS apical, posicionado anteriormente à inserção do êmbolo, subtubular, de ápice

bífido; reservatório pouco espiralado no grupo bicalcarata (figs. 230, 234); espiralado

no grupo yucatan (figs. 242, 247). Condutor hialino; êmbolo lamelar, fusionado ao

tégulo; base pouco alargada no grupo bicalcarata (figs. 230, 234), mais larga no

grupo yucatan (figs. 239, 247). Epígino com uma abertura de copulação anterior,

mais ampla no grupo yucatan do que no grupo bicalcarata; bolsa epiginal de fundo

cego presente em ambos os grupos; bolsa epiginal com abertura estreita e apenas a

margem posterior definida no grupo bicalcarata; com abertura ampla, ambas as

margens definidas em S. yucatan, somente a posterior definida em S. potosi (BES,

figs. 232, 236, 244, 249). Vulva com PVP pouco desenvolvida no grupo bicalcarata;

muito desenvolvida, cobrindo a maior parte da vulva no grupo yucatan; espermatecas

secundárias globulares em S. bicalcarata, tubulares, pouco diferenciadas emS. steckleri

e no grupo yucatan; espermatecas primárias bem desenvolvidas em ambos os grupos,

com ductos de fertilização curtos, de ápice agudo no grupo bicalcarata e longos, de

ápice rombo no grupo yucatan (figs. 233, 237, 245, 250).

Elenco. Seis espécies:

Septentrinna bicalcarata (Simon), comb. nov. (pás. 85).

Septentrinna paradoxa (F. O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - Guatemala.

Corinna paradoxa F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899 (holótipo BMNH, examinado).

Septentrinna potosi sp. nov. (pág. 89).

Septentrinna retusa (F. O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - Guatemala.

Corinna retusa F. O. PrekarD-CamBrIDGE, 1899 (holötipo BMNH, examinado).

Septentrinna steckleri (Gertsch), comb. nov. (pág. 86).

Septentrinna yucatan sp. nov. (pág. 88).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 85

Grupo bicalcarata

Diagnose. Abdômen não-pigmentado, sem padrão de colorido (fig. 229). ATR

| sem PV); tégulo com reservatório pouco espiralado; êmbolo curto (fig. 230, 234). Abertura

da bolsa epiginal estreita (figs. 232, 236); espermatecas primárias posicionadas

| medianamente; ductos de fertilização curtos (figs. 233, 237).

Septentrinna bicalcarata (Simon), comb. nov.

(Figs. 229-233)

| Corinna bicalcarata Simon, 1896:416 (holótipoS, Arizona, EUA, MNHN 9222, examinado): PETRUNKEVITCH,

| 1911:464: RoEweER, 1954:601; Bonner, 1956:1210.

| Castianeira bicalcarata; Banks, 1910:11; 1913:181.

Diagnose. Machos de Septentrinna bicalcarata diferem dos de S. steckleri pelo

palpo do macho com o lobo ventral da ATR afilado (vista ventral) e sinuoso (vista

retrolateral), de ápice não-lamelar; projeção mediana da ATR subcontígua ao lobo ventral;

projeções apicais do PTS pouco separadas entre si (figs. 230, 231); fêmeas diferem pela

área entre a abertura da BES e a margem posterior do epígino mais larga que longa;

| espermatecas secundárias grandes, globulares (figs. 232, 233).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça castanho-clara, mais escura na região

cefálica, quelíceras castanhas, enditos e lábio castanho-claros, esterno amarelo, de bordas

castanhas, pernas amarelas, abdômen amarelo-claro uniforme (fig. 229).

| Comprimento total 4,25. Carapaça: comprimento 2,0, largura 1,6, altura 0,8; clípeo, altura 0,16. Olhos:

fila anterior 0,57, posterior 0,62; QOM: comprimento 0,23, largura anterior 0,31, largura posterior 0,32; diâmetros:

OMA 0,13, OLA 0,12, OMP 0,1, OLP 0,1: interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,01, OMP-OMP 0,16,

OMP-OLP 0,13, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 0,92; retromargem com 4 dentes subiguais, separados.

Esterno: comprimento 1,18, largura 1,14. Abdômen: comprimento 2,35, largura 1,55. Pernas: comprimento relativo

1423. 1 - fêmur 1,65/ patela 0,75/ tíbia 1,37/ metatarso 1,25/ tarso 1,02/ total 6,04; II - 1,5/0,75/1,17/1,15/0,9/

5,47; II - 1,37/0,65/0,97/1,17/0,82/4,91; IV - 1,55/0,7/1,25/1,52/0,9/5,92. Espinulação: I- fêmur d1-1, p0-0-

1; tíbia v1p-2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-

1-1, p0-0-1, r0-0-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,r1-0-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-0-1, r0-0-1;

tíbia pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-0-1, v2-2-1. Palpo: figs. 230, 231.

Fêmea (Portal, Arizona). Coloração como no macho.

Comprimento total 5,1. Carapaça: comprimento 2,05, largura 3,65, altura 0,6; clípeo, altura 0,15. Olhos:

| fila anterior 0,55, posterior 0,61; QOM: comprimento 0,22, largura anterior 0,3, largura posterior 0,3; diâmetros:

OMA 0,1, OLA 0,1, OMP 0,07, OLP 0,09: interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,04, OMP-OMP 0,17,

| OMP-OLP 0,13, OLA-OLP 0,04. Quelíceras: comprimento 0,92; retromargem como no macho. Esterno:

| comprimento 1,2, largura 1,12. Abdômen: comprimento 3,0, largura 2,05. Pernas: comprimento relativo 4123.1

“= fêmur 1,6/ patela 0,75/ tíbia 1,3/ metatarso 1,15/tarso 0,9/ total 5,7; II- 1,52/0,75/1,2/1,12/0,9/5,49; III - 1,32/

0,62/0,97/1,15/0,8/4,86; IV - 1,6/0,72/1,3/1,55/0,87/6,04. Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia vlp-2-2-2-

2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1, p0-0-1, r0-0-

1; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,r1-0-1, v2-2-2. IV - fêmur d1-1-1, p0-0-1, r0-0-1; tíbia p1-1,12-1,

v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-0-1, v2-2-1. Epígino: figs. 232, 233.

| Variação. Comprimento: (10 S) total 4,1-6,6, carapaça 2,0-3,0, fêmur I 1,6-2,4; (10 2) total 4,6-6,6,

“carapaça 2,1-3,1, fêmur 1 1,5-2,35.

| Distribuição geográfica. Sudoeste dos Estados Unidos e norte do México.

| Material examinado. ESTADOS UNIDOS. New Mexico: Lincoln Co.,S, 01.VI.1978 (AMNH); Silver

| City, S, 12.1V.1950, H. L. Shantz (AMNH); Idalgo Co. (7 mi. W Animas), 2, B. Tomberlin et al. (AMNH);

(Animas Valley),9, 27.X1.1965, V. Roth (AMNH); Arizona: 5 mi. W Montezuma Pass (Huachuca Montains), O,

-07.IX.1950, W. J. Gertsch (AMNH); Paradise, S, 03.VIL. 1954, W. J. Gertsch (AMNH); Cochise Co. (Bowie), O,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

86 BONALDO |

X-X1.1972, V. Roth (AMNH); (Willcox),S, 07.IX.1950, W. J. Gertsch (AMNH); (50 mi. W Portal),9, V. 1962, |

W. J. Gertsch (AMNH):S, 26.V1.1955, M. Statham (AMNH); (Portal, Chiricahua Montains),9, 01.V1.1952,M. |

Cazier et al. (AMNH);?, 04.VII. 1954, W. J. Gertsch (AMNH); (Portal), S, 10.1X.1950, W. J. Gertsch (AMNH);

S,21.V1.1963, Shapiro (AMNH):S, 16-30.V1. 1964, W. J. Gertsch (AMNH); 29, 01-15.VI1.1964, W. J. Gertsch

(AMNH); &, 09.:1X.1964, W. J. Gertsch (AMNH); &, 28.X.1964, V. Roth (AMNH); 3 6,3, VI, VI. 1965, W. J.

Gertsch (AMNH); ?, 16-30.VII.1965, W. J. Gertsch (AMNH); 26, 06.VIII.1965, W. J. Gertsch (AMNH, MEN

28920); 25,9, VIILIX.1966, W. J. Gertsch (AMNH);S, 04.VI.1972, G. Dingerkus (AMNH);?, 15. VEL 1974, |

M. & T.M. Favreau (AMNH): 6, 22.V11.1975, W. J. Gertsch (AMNH);c), 20.V.1982, W. J. Gertsch (AMNH);

(10 mi. Apache), 9, 12.VII. 1963, V. Roth (AMNH); Texas: Brewster Co. (Marathon), 2, 1920 (AMNH); (Big

Bend National Park), O, 9, 24.V.1965, K. W. Haller (AMNH); Guadalupe Pass (SW of Pine Springs, 104° 50° W, |

31º53º N),9, 25.V.1963, W. J. Gertsch & W. Ivie (AMNH); Hudspeth Co. (Signal Peak), 29, 15.1V.1961, W.J. |

Gertsch (AMNH). MEXICO. Chihuahua: Rancho Nogales (Sierra de En Medio), &, 25.1X-05.X.1951, W. S. |

Creighton (AMNH); Durango: La Quebrada,?, 30.VII.1947, W. J. Gertsch (AMNH).

Septentrinna steckleri (Gertsch), comb. nov.

(Figs. 104, 234-237)

Chemmis steckleri GERTSCH, 1936: 17 (holötipo?j, Tucson, Arizona, EUA, VII, VII. 1935, P. Steckler, AMNH,

examinado): RoEWER, 1954:61 1; BoNNET, 1956:1040.

Diagnose. Machos de Septentrinna steckleri diferem dos de S. bicalcarata pelo |

palpo do macho com o lobo ventral da ATR engrossado (vista ventral) e sub-reto (vista |

retrolateral), de ápice lamelar; projeção mediana da ATR contígua ao lobo ventral;

projeções apicais do PTS bem separadas entre si (figs. 104, 234, 235); fêmeas diferem

pela área entre a abertura da BES e a margem posterior do epígino mais longa que

larga; espermatecas secundárias pequenas, subtubulares (figs. 236, 237).

Descrição. Macho (Sabino Canyon, Arizona). Carapaça castanho-avermelhada,

quelíceras castanho-avermelhadas escuras; enditos e lábio castanhos, esterno e pernas

castanho-avermelhados claros, abdômen amarelo uniforme.

Comprimento total 5,1. Carapaça: comprimento 2,5, largura 2,0, altura 0,92; clipeo, altura 0,27. Olhos:

fila anterior 0,63, posterior 0,79; QOM: comprimento 0,32, largura anterior 0,37, largura posterior 0,35; diâmetros:

OMA 0,15, OLA 0,12, OMP 0,1, OLP 0,11; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,04, OMP-OMP

0,16, OMP-OLP 0,17, OLA-OLP 0,04. Quelíceras: comprimento 1,12; retromargem com 4 dentes iguais separados.

Esterno: comprimento 1,42, largura 1,4. Abdômen: comprimento 2,5, largura 1,5. Pernas: comprimento relativo

4123. 1- fêmur 2,4/ patela 1,05/ tíbia 2,15/ metatarso 1,85/tarso 1,55/ total 9,0; II - 2,25/1,0/1,9/1,8/1,45/8,4; III

- 2,0/0,9/1,65/1,9/1,35/7,8; IV - 2,45/0,95/2,05/2,45/1,5/9,4. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1: tíbia vlp-2-2-

2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur dl-1, p0-0-1: tíbia, vlp-2-2-2-2-2; metatarso v2-2. IN - fêmur dl-1-1, p0-1-1-

1,r0-0-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, pO-1-1, r0-0-1; tíbia pl-

1,rl-1,v2-2-2: metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 234, 235.

Fêmea (Sabino Canyon, Arizona). Coloração como no macho.

Comprimento total 7,6. Carapaça: comprimento 3,1, largura 2,5, altura 1,05; clípeo, altura 0,3. Olhos: fila |

anterior 0,82, posterior 0,91; QOM: comprimento 0,32, largura anterior 0,43, largura posterior 0,39: diâmetros:

OMA 0,18, OLA 0,15, OMP 0,11, OLP 0,12; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,04, OMP-OMP

0,19, OMP-OLP 0,19, OLA-OLP 0,05. Quelíceras: comprimento 1,2; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 1,65, largura 1,55. Abdômen: comprimento 4,4, largura 3,1. Pernas: comprimento relativo 4123.1

- fêmur 2,55/ patela 1,15/ tíbia 2,25/ metatarso 1,95/ tarso 1,6/ total 9,5; II - 2,5/1,15/2,05/1,9/1,5/9,1; HI - 2,2/

0,95/1,8/2,1/1,4/8,45; IV - 2,7/1,1/2,25/2,7/1,6/10,35. Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1-1; tíbia v 1p-2-2-2-2-

2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-0-1-1; tíbia vlp-2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-

1,r0-0-1-1; tíbia p1-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1,170-0-1: tíbia |

pl-1,r0-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-21. Epigino: figs. 236, 237.

Variação. Comprimento: (100) total 5,1-7,0, carapaça 2,6-3,3, fêmur 12,2-2,9: (99) total 5,5-6,7, carapaça

2,15-3,25, fêmur I 1,75-2,6. Em alguns exemplares, a carapaça e as pernas são castanho-avermelhadas escuras.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 87

Figs. 229-237. Septentrinna bicalcarata (Simon): 229, macho, cefalotórax e abdômen, dorsal; 230, palpo, ventral;

231, palpo, retrolateral; 232, epígino, ventral; 233, epígino, dorsal. S. steckleri (Gertsch): 234, palpo, ventral;

235, palpo, retrolateral; 236, epígino, ventral; 237, epígino, dorsal. Abreviaturas: AC, abertura de copulação;

BES, bolsa epiginal de Septentrinna; PMS, projeção mediana da apófise tibial retrolateral de Septentrinna. Figs.

229: 230-237 (barras, 0,25 mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

88 BONALDO

Distribuicäo geogräfica. Sudoeste dos Estados Unidos e norte do Mexico.

Material examinado. ESTADOS UNIDOS. Califórnia: Imperial Co. (13 mi. W Winterhauer), 9,

01.V1.1956, V. Roth; Arizona: Maricopa Co. (near Phoenix),S, 1959; Wellton, 2, 06.1.1941, S. D. Mulaik; Santa

Catalina Montains (Sabino Canyon), 2, 18.VIII.1950, M. A. Cazier; 2 9, 2, 06.V1.1952, M. Cazier et al.;

Boboquivari Montains (Rancho El Mirador), S, 29, 04.IX.1950, W. J. Gertsch; Huachuca Montains,g,, 03.X1.1937,

O. Bryant; (Carr Canyon),O, 29, 03.V1.1952, M. Casier et al.; Cochise Co. (Austin Springs, 18 mi. E Douglas),

S, 30.V.1966, B. Voguel; Oro Blanco Montains (18 mi. Nogales), S, 2, VIL 1937, P. Steckler; Nogales, &,

24.VII1.1939, R. H. Crandall; Pina Co. (Colossal Cave Park), S,2, 18.1V.1970, K. Stephan; Santa Rita Montains

(Old Parker Ranch), 26, 10.1X.1939; Tucson, 2, 30.1V.1940, Bryant (todos no AMNH); (10 mi. E Tucson), &,

10.1V.1935, A. Griswold (MCZ). MÉXICO. Sonora: Santa Ana,?, 02.X1.1983, V. Roth (CAS).

Grupo yucatan

Diagnose. Abdömen com padrão de colorido (fig. 246). ATR com PV; tégulo com

reservatório bem espiralado; êmbolo longo (figs. 105, 242, 247). Abertura da bolsa

epiginal ampla (figs. 244, 249): espermatecas primárias posicionadas anteriormente;

ductos de fertilização longos (figs. 245, 250).

Septentrinna yucatan sp. nov.

(Figs. 15, 43, 64, 105, 238-245)

Holótipos, Chichen-Itzä, Yucatán, México, 08.VII.1948, C. Goodnight (AMNH).

Etimologia. O substantivo em aposição é alusivo ao Estado de Yucatán, México,

onde se encontra a localidade-tipo.

Diagnose. Machos de Septentrinna yucatan diferem dos de S. potosi pela ATR do

palpo do macho com projeção mediana, representada por um pequeno tubérculo, afastado

do lobo ventral; lobo dorsal direcionado obliquamente em relação ao eixo longitudinal

da tíbia; projeções apicais do PTS curtas, pouco conspícuas (figs. 238-243); fêmeas

diferem pela abertura de copulação relativamente pequena e pela BES, com margem

anterior procurva e posterior bem definida (fig. 244).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça, quelíceras e lábio castanho-avermelhados,

enditos castanho-avermelhados claros, esterno castanho-avermelhado claro com rebordo

escuro, pernas amarelo-escuras, manchadas de castanho, dorso do abdômen cinza-

violáceo com 3 pares de manchas amarelo-claras: um anterior, um mediano e um posterior

e uma grande mancha ímpar posterior; ventre amarelo-claro.

Comprimento total 5,5. Carapaça: comprimento 2,7, largura 2,1, altura 1,07; clípeo, altura 0,28. Olhos:

fila anterior 0,77, posterior 0,98; QOM: comprimento 0,4, largura anterior 0,47, largura posterior 0,48; diâmetros:

OMA 0,21, OLA 0,17, OMP 0,15, OLP 0,16; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,04, OMP-OMP

0,2, OMP-OLP 0,2, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 1,3; retromargem com 5 dentes separados, primeiro

menor. Esterno: comprimento 1,45, largura 1,37. Abdômen: comprimento 2,9, largura 1,8. Pernas: comprimento

relativo 4123. I - fêmur 2,4/ patela 0,95/ tíbia 2,2/ metatarso 1,95/ tarso 1,5/ total 9,0; II - 2,2/0,95/1,8/1,8/1,3/

8,05; II - 1,8/0,8/1,5/1,9/1,2/7,2; IV - 2,45/0,9/2,2/2,6/1,45/9,6. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia vlp-

2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v1r-2-2; metatarso v2-2. HI - fêmur d1-1-0, p1-0,r1-0; tíbia

pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,rl-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, pl-0-1, r0-0-1; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2;

metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 238-243.

Fêmea (parátipo). Coloração como no macho, exceto dorso do abdômen com um

par adicional de manchas brancas medianas.

Comprimento total 7,3. Carapaça: comprimento 3,1, largura 2,4, altura 1,25; clípeo, altura 0,3. Olhos: fila

anterior 0,95, posterior 1,11; QOM: comprimento 0,41, largura anterior 0,55, largura posterior 0,52; diâmetros:

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 89

OMA 0,23, OLA 0,18, OMP 0,16, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,04, OMP-OMP

| 0,25, OMP-OLP 0,21, OLA-OLP 0,04. Quelíceras: comprimento 1,52; retromargem como no macho. Esterno:

| comprimento 1,7, largura 1,42. Abdômen: comprimento 3,8, largura 2,4. Pernas: comprimento relativo 4123. 1-

| fêmur 2,6/ patela 1,1/tíbia 2,35/ metatarso 1,9/tarso 1,6/ total 9,55; II - 2,4/1,05/1,85/1,85/1,4/8,55 ; HI - 2,1/

| 0,9/1,6/2,05/1,3/7,95 ; IV - 2,8/1,05/2,45/3,0/1,5/10,8. Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2;

| metatarso v2-2. II -femur d1-1, p0-0-1-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur dl-1-1, pl-1,r1-1; tíbia pl-1,

| r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1,p1-0-1,r0-0-1; tíbia pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso

| pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epigino: figs. 244, 245.

Variação. Comprimento: (7 &) total 5,2-6,3, carapaça 2,5-3,1, fêmur 12,3- 2,85.

Distribuição geográfica. Yucatán, México.

Material-tipo. Parátipos: MÉXICO. Yucatán: Dzibilchaltun,S, 09.VIII.1964, J. C. Pallister; Chicken-

| Itzä, 49), 16-18.11.1939:9, VL 1948, C. & M. Goodnight; S, 16.VI1.1952,J. & D. Pallister; Yaxche, &, 06.1X.1964,

| J. C. Pallister; todos depositados no AMNH.

Septentrinna potosi sp. nov.

(Figs. 246-250)

| Holótipo 9, 1 mi. SW de Tamazunchale (98º 49° W, 21º 15º N), San Luis de

| Potosí, México, 25.V11.1966, J. & W. Ivie (AMNH).

| Etimologia. O substantivo em aposição é alusivo à região onde se encontra a

localidade-tipo.

| Diagnose. Machos de Septentrinna potosi diferem dos de S. yucatan pela ATR do

palpo do macho com projeção mediana muito desenvolvida, contígua ao lobo ventral;

lobo dorsal direcionado transversalmente em relação ao eixo longitudinal da tíbia;

projeções apicais do PTS longas, conspícuas (figs. 247, 248); fêmeas diferem pela abertura

de copulação ampla e pela BES, com margem anterior recurva e posterior não-definida

(fig. 249).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça e quelíceras castanho-avermelhadas

escuras, enditos e lábio castanho-avermelhados, esterno castanho-avermelhado com

bordas mais escuras, pernas amarelas, manchadas de castanho, dorso do abdômen cinza-

escuro, com 3 pares de manchas amarelo-claro e uma mancha posterior (fig. 246),

ventre do abdômen amarelo-claro.

Comprimento total 6,5. Carapaça: comprimento 3,1, largura 2,5, altura 1,25; clípeo, altura 0,32. Olhos:

fila anterior 1,0, posterior 1,12; QOM: comprimento 0,45, largura anterior 0,52, largura posterior 0,5; diâmetros:

OMA 0,22, OLA 0,17, OMP 0,2, OLP 0,2; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,17, OMP-OLP 0,22, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,6; retromargem com 5 dentes subiguais,

separados. Esterno: comprimento 1,7, largura 1,55. Abdômen: comprimento 3,2, largura 2,1. Pernas: comprimento

relativo 4123. I- fêmur 2,85/ patela 1,15/ tíbia 2,55/ metatarso 2,2/ tarso 1,9/ total 10,65; II - 2,7/1,1/2,15/2,1/

1,75/9,8; HI - 2,2/1,0/1,75/2,25/1,4/8,6; TV - 2,95/1,05/2,45/3,05/1,65/11,15. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-

* 1 tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia v2-0-2-2-2; metatarso v2-2. HI - fêmur dl-1-1,

* p0-1-1,r0-1-1; tibiapl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p1-0-1,r0-0-1; tíbia

“ pl-1,rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 247, 248.

Fêmea (parátipo). Coloração como no macho.

Comprimento total 8,6. Carapaça: comprimento 3,6, largura 2,9, altura 1,37; clípeo, altura 0,32. Olhos:

fila anterior 1,15, posterior 1,35; QOM: comprimento 0,52, largura anterior 0,62, largura posterior 0,6; diâmetros:

OMA 0,27, OLA 0,2, OMP 0,2, OLP 0,2: interdistâncias: OMA-OMA 0,15, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP 0,23,

OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,9: retromargem com 6 dentes, o primeiro menor.

Esterno: comprimento 2,02, largura 1,72. Abdômen: comprimento 4,7, largura 3,1. Pernas: comprimento relativo

4123. 1 - fêmur 3,15/ patela 1,35/ tíbia 2,75/ metatarso 2,3/ tarso 2,05/ total 11,6; II - 3,0/1,25/2,4/2,25/1,85/

10,75 ; II - 2,6/1,15/2,0/2,5/1,5/9,75; IV - 3,35/1,2/2,9/3,5/1,85/12,8. Espinulação: I - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia

v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia vlr-0-2-2-2 metatarso v2-2. HI - fêmur d1-1-1, p0-1-1,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

90 BONALDO

Figs. 238-241. Septentrinna yucatan sp. nov.: 238, palpo, retrolateral; 239, 240, ápice do bulbo, ventral; 241,

ápice do êmbolo, ventral. Abreviaturas: C, condutor; E, &mbolo; LD, lobo dorsal da apófise tibial retrolateral; LV,

lobo ventral da apófise tibial retrolateral; PCr, processo cimbial basal retrolateral; PTS, processo tegular de

Septentrinna; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 9]

Figs. 242-250. Septentrinna yucatan sp. nov.: 242, palpo, ventral; 243, palpo, retrolateral; 244, epigino, ventral;

245, epígino, dorsal. Septentrinna potosi sp. nov.: 246, macho, abdômen, dorsal; 247, palpo, ventral; 248, palpo,

retrolateral; 249, epígino, ventral; 250, epígino, dorsal. Abreviatura: PMS, projeção mediana da apófise tibial

retrolateral de Septentrinna. Figs. 246; 242-245; 247-250, respectivamente na mesma escala (barras, 0,25 mm).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

9 BONALDO

r0-1-1: tíbia pl-1, r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, pl-0-1, r0-0-1; tíbia p1-1, rl-

1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epigino: figs. 249, 250.

Distribuicäo geogräfica. Conhecida apenas da localidade-tipo.

Material-tipo. Parátipo. MÉXICO. San Luis de Potosí: Tamazunchale, 9, 20.V.1952, M. Cazier et al.

(AMNH).

Simonestus gen. nov.

Espécie-tipo. Diestus validus Simon.

Etimologia. O nome genérico, masculino, vem da reunião das palavras Simon e

Diestus, em homenagem ao aracnólogo francês Eugene Simon, por sua relevante |

contribuição ao conhecimento de Corinninae.

Diagnose. Carapaça alta, subquadrangular, com estreitamento cefálico quase nulo

(figs. 251, 252); laterais da região cefálica sub-retas; garras das quelíceras curtas, menores

que um terço do comprimento das quelíceras (fig. 16); espinhos ventrais das tíbias e

metatarsos I e II curtos e grossos. Palpo do macho com ATR única, sem PV; condutor

hialino; êmbolo inserido em uma projeção tegular prolátero-apical (figs. 253, 257).

Epígino com uma abertura de copulação (figs. 255, 259); PVP encobrindo parcialmente

as espermatecas primárias e provida de curtas projeções laterais (figs. 256, 260).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 8,3-17,4. Carapaça mais longa

que larga, sub-retangular, praticamente glabra, com poucas cerdas eretas restritas à

região ocular; granulações densas, finas, distribuídas regularmente; maior largura no

nível das coxas II, maior altura entre a inserção do palpo e a perna I. Região cefálica

bem delimitada, estreitamento praticamente nulo (fig. 251); margem anterior sub-reta,

tubérculo interocular ausente; região torácica gradualmente rebaixada (fig. 252) em S.

validus; rebaixamento mais abrupto em S. separatus; sulco torácico curto e profundo,

menor que o comprimento do QOM; margem posterior com ou sem invaginação mediana.

Clípeo igual ou pouco maior do que um diâmetro dos OMA. Ambas as fila de olhos

levemente procurvas, a posterior quase reta; QOM pouco mais largo que longo, largura

anterior maior que a posterior; cômoro ocular lateral conspícuo. Olhos médios circulares,

laterais subovais; OMA maiores, demais subiguais em tamanho. Interdistâncias: OMA-

OMA separados por menos de um diâmetro; OMA-OLA por um e meio a dois diâmetros

dos OMA; OMP-OMP por um a dois diâmetros; OMP-OLP por dois a quatro diâmetros

dos OMP; OLA-OLP subcontíguos. Chilum dividido, liso, glabro. Quelíceras

geniculadas, curtas, menores que a metade do comprimento da carapaça; face frontal

densamente granulada; retrolateral sem estrias; côndilo basal subtriangular;

retromargem do sulco subungueal com 4 dentes contíguos; garra curta, menor que um

terço do comprimento da quelícera (fig. 16). Enditos convergentes, promargem

ligeiramente côncava, retromargem pouco escavada. Lábio mais longo que largo, maior

que a metade do comprimento dos enditos. Esterno mais longo que largo, pouco hirsuto,

com pêlos näo-inseridos em tubérculos emS. validus e em tubérculos em S. separatus;

rebordo nítido; laterais da margem anterior pouco projetadas; escavações esternais

ausentes.

Pernas curtas, robustas, quase glabras, com pêlos simples; comprimento relativo

variável, 1423 em S. validus, 4123 em S. separatus. Apenas a superfície prolateral

ventral das coxas I com pêlos inseridos em tubérculos. Espinhos ventrais das tíbias e

metatarsos Ie Il curtos e grossos; tíbia I com 4 ou 5 pares de espinhos ventrais; metatarso

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 93

| I com 2 pares de espinhos ventrais. Escópulas densas em todos os tarsos e nos metatarsos

Tel (figs. 34, 35); metatarsos III e IV com tufo de cerdas ventro-distais denso em 5.

| validus, inconspícuo em S. separatus; unhas tarsais lisas em S. validus, pectinadas,

| com poucos dentes muito curtos em. separatus; pêlos subungueais densos; tricobótrias

| tarsais distribuídas irregularmente sobre a superfície dorsal (figs. 65, 66); órgão tarsal

| (fig. 71) subapical; unha do tarso do palpo da fêmea lisa ou com poucos dentes curtos;

| todos os trocanteres não- recortados.

Abdômen com cerdas simples eretas esparsas, sem pêlos plumosos; scutum dorsal

apenas em machos, restrito ao terço anterior (fig. 251); scutum ventral ausente em

| ambos os sexos; tubérculo traqueal ausente. Cólulo representado por uma placa triangular

| coberta por pêlos simples.

Palpo do macho. Tíbia menor que a metade do comprimento do címbio; ATR

| simples, geralmente com ápice bífido; PV ausente. Címbio com PCr pouco proeminente

em S. validus, ausente em S. separatus; com PCp bem desenvolvido (figs. 253, 254,

257, 258). Subtégulo inteiro: fundus não-alargado, no tégulo; PTd de ápice não-dobrado

em gancho (fig. 96); reservatório muito espiralado. Condutor hialino; êmbolo fusionado

| ao tégulo, de ápice abruptamente afilado, inserido em uma projeção tegular prolätero-

apical (figs. 253, 257). Epígino com uma abertura de copulação mediana, com o terço

| posterior convexo (figs. 255, 259). Vulva com PVP pouco desenvolvida, com as laterais

projetadas, encobrindo parcialmente as espermatecas primárias; espermatecas secundárias

muito grandes, reniformes; espermatecas primárias globulares, menores que as

| secundárias (figs. 256, 260).

Elenco. Seis especies:

Simonestus occidentalis (Schenkel), comb. nov. - Venezuela.

Diestus occidentalis SCHENKEL, 1953 (holötipo MHNB, examinado).

Simonestus pseudobulbulus (Caporiacco), comb. nov. - Guatemala.

Corinna pseudobulbula Caroriacco, 1938 (tipo não-examinado).

Simonestus robustus (Chickering), comb. nov. - Panamá.

Corinna robusta CHickERING, 1937 (tipos MCZ, não-examinados).

Simonestus semiluna (F.O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - México.

Corinna semiluna F.O PrckarD-CAMBRIDGE, 1899 (holótipo BMNH, examinado).

Simonestus separatus (Schmidt), comb. nov. (pág. 94).

Simonestus validus (Simon), comb. nov. (pág. 93).

Simonestus validus (Simon), comb. nov.

(Figs. 34, 35, 65, 66, 71, 96, 251-256)

| Diestus validus Simon, 1898:197, figs. 193, 194 (sintipos 25, 79, Colonia Tovar, Merida, Venezuela, presente

| designação de lectótipo & e paralectötipos &, 7 2, MNHN, examinados); ROEWER, 1954:602; CAPoRIACCO,

| 1955:375, fig. 45; Bonner, 1956:1464.

Diagnose. Machos de Simonestus validus diferem dos de S. separatus pelo tégulo

“do palpo do macho com uma série de projeções laminares retrolaterais, subapicais e êmbolo

| afilado, sem carena subapical (figs. 253, 254); fêmeas diferem pelo epígino com abertura

| de copulação localizada em uma depressão estreita, mais longa que larga (fig. 255).

| Descrição. Macho (Alto do Rio Lemon, Caracas). Carapaça castanho-avermelhada,

“mais escura na região torácica, quelíceras, enditos e lábio negros, esterno amarelo-

“escuro, perna I castanho-avermelhada, restantes castanhas, dorso do abdômen cinza-

“escuro, ventre cinza-claro.

| Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

94 BONALDO

Comprimento total 13,0. Carapaça: comprimento 6,5, largura 5,3, altura 3,0; clípeo, altura 0,4. Olhos: fila

anterior 2,7, posterior 3,05; QOM: comprimento 0,75, largura anterior 1,0, largura posterior 1,0; diâmetros: OMA

0,35, OLA 0,3, OMP 0,3, OLP 0,25: interdistâncias: OMA-OMA 0,3, OMA-OLA 0,6, OMP-OMP 0,5, OMP-

OLP 0,9, OLA-OLP 0,2. Quelíceras: comprimento 3,7; retromargem com 4 dentes subiguais, contiguos. Esterno:

comprimento 3,5, largura 2,7. Abdômen: comprimento 6,2, largura 4,1. Pernas: comprimento relativo 1423. T-

fêmur 5,4/ patela 2,7/tíbia 4,6/ metatarso 4,0/ tarso 2,0/ total 18,7; II - 4,6/2,5/3,8/3,6/1,7/16,2; HI - 3,5/2,2/2,6/

3,2/1,4/12,9; IV - 4,7/2,3/4,1/4,4/1,6/17,1. Espinulação: I - fêmur d1-0-0, p0-0-1: tíbia vlp-2-2-2-2; metatarso

v2-2. II - fêmur d1-0-0, p0-0-1: tíbia vlp-1p-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur dl-1-1, p0-1-1; tíbia p0-1,r1-1, v2-

2-2: metatarso p1-1-1,r0-1-0, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, r0-0-1; tíbiarl-1, vlp-2-2; metatarso p0-0-1,11-1-0, v2-

2-1. Palpo: figs. 253, 254.

Fêmea (Alto do Rio Lemon, Caracas). Coloração como no macho. |

Comprimento total 16,2. Carapaça: comprimento 6,7, largura 5,2, altura 3,0; clípeo, altura 0,5. Olhos: fila '

anterior 3,0, posterior 3,3; QOM: comprimento 0,75, largura anterior 1,1, largura posterior 1,0; diâmetros: OMA :

0,4, OLA 0,3, OMP 0,3, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,35, OMA-OLA 0,7, OMP-OMP 0,5, OMP-

OLP 1,0, OLA-OLP 0,2. Quelíceras: comprimento 3,7; dentes como no macho. Esterno: comprimento 3,5, largura

2,8. Abdômen: comprimento 8,7, largura 5,6. Pernas: comprimento relativo como no macho. I - fêmur 4,9/ patela

2,6/ tíbia 4,1/ metatarso 3,6/tarso 1,7/total 16,9; II - 4,2/2,2/3,3/3,2/1,6/14,5; HI - 3,4/2,1/2,5/3,2/1,3/12,5: IV

- 4,4/2,3/4,0/4,1/1,5/16,3. Espinulagäo: I - fêmur d1-1, p0-0-1: tíbia vlp-2-2-2-2; metatarso v-2-2. II - fêmur dl-

1, p0-0-1; tíbia vlp-1p-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur dl-1-1, p0-1-0, r0-0-1; tíbia p0-1, rl-1, v2-2-2; metatarso

p0-1-1,r0-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, r0-0-1; tíbia rl-1, vlp-2-2; metatarso p0-0-1, r1-1-0, v2-2-1. Epígino:

figs. 255, 256.

Variação. Comprimento: (5 0) total 8,8-14,1, carapaça 4,5-7,9, fêmur I 3,6- 6,1; (109) total 9,5-17,4,

carapaça 4,4-8,4, fêmur 13,5-6,4.

Distribuição geográfica. Norte da Venezuela.

Material examinado. VENEZUELA. 9 (SMF 5591); Distrito Federal: Caracas (Alto do Rio Lemon),

25, 29, 14.1.1981, A. R. Delgado & M. A. Gonzales-Sponga (CPS 841, MCN 28441); 9, 11.1950, Marcuzzi

(MUCV XI1-772);5, 04.11.1951, Foldats (MUCV XII-1040); (San José del Avila), S, 1940, P°C. Vogl (AMNH);

Entre El Junquito e Carayaca, 39, 02.V.1981, A. R. Delgado & M. A. Gonzales-Sponga (CPS 169); El Junguito,

S,09.:1.1982, R. T. Schuh (AMNH); Aragua: Rancho Grande (próximo a Maracay), 29, 27.1V-04.V.1945, W.

Beebe et al. (AMNH);?, 15.VIIL.1945, W. Beebeet al. (AMNH);?, 15-31 .111.1946, W. Beebee et al. (AMNH);

2, 05.VII.1946, W. Beebee et al. (AMNH); 2, 11.11.1951, Scorza (MUCV XII-389); Ricaurte (La Montanita,

Tiara, Carretera Tejerías),9, 5), 18.1V.1951, M. A. Gonzales-Sponga et al. (CPS 099).

Simonestus separatus (Schmidt), comb. nov.

(Figs.16, 17, 257-260)

Diestus separatus SCHMIDT, 1971:405, figs. 11, 12 (holótipoS, parátipo9 (epigino em lâmina de microscopia),

coletados em Hamburg, em carregamento de banana proveniente do Equador; SMF 25794, holótipo e epigino

do parätipo, examinados): BRIGNOLI, 1983:556.

Corinna casueta CHICKERING, 1972:368, figs. 8-10 (holótipo &, Ilha de Barro Colorado, Zona do Canal, Panamá,

04.VI1.1954, MCZ, não-examinado; parätipo S, mesma procedência, 02.VIII. 1936, MCZ; parátipo S, Gatun,

Zona do Canal, Panamá, 06.11.1958, MCZ, examinados); BrIGNOLI, 1983:556. Syn. nov.

Diagnose. Machos de Simonestus separatus diferem dos de S. validus pelo tégulo

do palpo do macho sem projeções laminares retrolaterais e êmbolo relativamente |

engrossado, com distinta carena subapical (figs. 257, 258); fêmeas diferem pelo epígino

com abertura de copulação localizada em depressão ampla, mais larga que longa (fig.

DS)

Macho (holótipo). Carapaça castanho-avermelhada escura, mais escura na região

cefálica; quelíceras negro-avermelhadas, iridescentes, enditos e lábio castanho-escuros;

esterno castanho, bordas castanho-escuras; pernas amarelas, tíbias e metatarsos III e IV

com pigmento castanho-escuro; dorso do abdômen cinza, ventre amarelo. |

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 95

Figs. 251-260. Simonestus validus (Simon): 251, macho, cefalotórax e abdômen, dorsal; 252, macho, cefalotórax,

lateral; 253, palpo, ventral; 254, palpo, retrolateral; 255, epígino, ventral; 256, epígino, dorsal; S. separatus

(Schmidt): 257, palpo, ventral; 258, palpo, retrolateral; 259, epígino, ventral; 260, epígino, dorsal. Figs. 251, 252

| (barra, 2 mm); 253-256; 257-260 (barras, 0,25 mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

96 BONALDO

Comprimento total 8,0. Carapaca: comprimento 4,25, largura 3,6, altura 1,95; clipeo, altura 0,37. Olhos:

fila anterior 1,7, posterior 2.0; QOM: comprimento 0,62, largura anterior 0,87, largura posterior 0,82; diämetros:

OMA 0,4, OLA 0,25, OMP 0,27, OLP 0,25; interdistäncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,25, OMP-OMP 0,3,

OMP-OLP 0,57, OLA-OLP 0,1. Queliceras: comprimento 1,87; retromargem com 4 dentes contiguos, primeiro

e quarto menores. Esterno: comprimento 2,15, largura 1,8. Abdömen: comprimento 3,3, largura 2,5. Pernas:

comprimento relativo 4123. I - fêmur 3,45/ patela 1,65/ tibia 2,75/ metatarso 2,25/ tarso 1,3/ total 11,4; II - 3,1/

1,5/2,4/2,2/1,2/10,4; III - 2,7/1,3/1,95/2,3/1,0/9,25; IV - 3,55/1,55/3,05/3,1/1,25/12,5. Espinulacäo: I - fêmur

d0-1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2-1. II - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia vlr-Ir-Ir-1r; metatarso v2-2-1.

HI - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-0-1; tíbia p0-1, rl-1, v1p-2-2, metatarso p0-1-1,r1-1-0, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1,

r0-0-1; tibiarl-1, vlp-1p-2; metatarso p0-0-1,r1-1-0, v2-2-1. Palpo: figs. 257, 258.

Fêmea (Guatemala). Coloração como no macho.

Comprimento total 9,0. Carapaça: comprimento 4,4, largura 3,6, altura 2,5: clípeo, altura 0,37. Olhos: fila |

anterior 1,92, posterior 2,2: QOM: comprimento 0,65, largura anterior 0,9, largura posterior 0,8; diâmetros: OMA |

0,35, OLA 0,27, OMP 0,27, OLP 0,22: interdistâncias: OMA-OMA 0,22, OMA-OLA 0,25, OMP-OMP 0,3,

OMP-OLP 0,6, OLA-OLP 0,15. Quelíceras: comprimento 2,0; retromargem como no macho. Esterno: comprimento

2,2, largura 1,9. Abdômen: comprimento 4,5, largura 3,3. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 - fêmur 3,1/

patela 1,5/tíbia 2,5/ metatarso 2,1/tarso 1,2/total 10,4; II - 2,9/1,5/2,1/1,9/1,1/9,5; HI - 2,5/1,3/1,9/2,1/0,9/8,7;

IV -3,2/1,5/2,7/2,8/1,0/11,2. Espinulação: I- fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2-1. II - fêmur

d1-1, p0-0-1; tíbia vIr-Ir-1r-2; metatarso v2-2-1. III - fêmur d1-1-1, pO-1-1, r0-0-1; tíbia p0-1, rl-1, vip-1p-2:

metatarso p0-1-1,r0-1-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, r0-0-1; tíbiarl-1, vlp-1p-2; metatarso p0-0-1, rl-1-0, v2-2-

1. Epigino: figs. 259, 260.

Variação. Comprimento: (4d) total 8,3-9,2, carapaça 4,3-4,7, fêmur 13,1- 3,5.

Distribuicäo Geogräfica. America Central e noroeste da America do Sul.

Material examinado. GUATEMALA..9 (AMNH). PERU. Huánuco: Panguana (Pachitea, Rio Yuyapichis,

9° 37 S, 74º 56º W),29, M. Verhaagh (SMNK).

Creugas Thorell, revalidado

Hypsinotus L. KocH, 1866:270 (espécie-tipo por designação original, Hypsinotus bellator L. Kock, 1866; pré-

ocupado por Hypsinotus Temminck & Schlegel, 1844, Pisces); sinonimizado com Corinna por SIMON,

1898:196; Bonner, 1957:2267. Syn. nov.

Creugas THORELL, 1878:175 (espécie-tipo por monotipia, Creugas gulosus Thorell, 1878), sinonimizado com

Corinna por Simon, 1898:196; Bonner, 1956:1249.

Phanoptilus THORELL, 1887:40 (espécie-tipo por monotipia, Phanoptilus sericeus Thorell, 1887); sinonimizado

com Creugas por THORELL, 1897:243; Bonner, 1958:3500.

Pranopis THorELL, 1891:20 (especie-tipo por monotipia, Pranopis punctata, Thorell, 1891); sinonimizado com

Creugas por THoRrELL, 1897:243; Bonner, 1958:3768.

Diagnose. Clipeo baixo. Palpo do macho com ATR bilobada, com PV; PCr

desenvolvido; reservatörio pouco espiralado, de percurso simples, com apenas uma volta

em “S” proximal; &mbolo modificado, com processo embolar (PEC) e/ou divisäo apical

(DAC) (figs. 261-264, 267, 271, 275, 280). Epigino com duas pequenas aberturas de

copulação posteriores, afastadas entre si, ou uma ampla abertura de copulagäo anterior

(figs. 269, 273, 277, 282).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 5,4-14,8. Carapaça suboval,

pouco mais longa que larga, mais alongada no grupo gulosus; semiglabra a densamente

coberta por pêlos simples e plumosos; com granulações finas no grupo gulosus (figs. 5,

6); lisa no grupo bellator; maior largura entre as coxas Il e III, maior altura no nível da

inserção do palpo. Região cefálica pouco delimitada, estreitamento pouco acentuado no |

grupo gulosus (fig. 5), acentuado no grupo bellator; margem anterior truncada, reta no |

grupo bellator, mais convexa no grupo gulosus; tubérculo interocular ausente; carapaça

baixa, região torácica abruptamente rebaixada posteriormente, menor rebaixamento em

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 97

machos; sulco torácico profundo e longo, de comprimento igual ou maior que o do

QOM; invaginação mediana da margem posterior sub-reta. Clipeo com um a dois

diâmetros dos OMA no grupo gulosus, mais baixo, pouco maior que um diâmetro dos

OMA no grupo bellator. Fila de olhos anteriores levemente procurva; fila de olhos

posteriores sub-reta no grupo gulosus, procurva no grupo bellator; QOM

aproximadamente tão longo quanto largo no grupo gulosus, nitidamente mais longo

que largo no grupo bellator; largura anterior pouco maior que a posterior; cômoro ocular

lateral conspícuo. Olhos médios circulares, laterais subovais; no grupo gulosus, olhos

subiguais em tamanho, OMA pouco maiores que os demais; no grupo bellator, OMA

nitidamente maiores, demais subiguais. Interdistâncias: OMA-OMA separados por meio

diâmetro ou menos; OMA-OLA por menos da metade do diâmetro dos OMA em C.

gulosus, mais afastados entre siemC. cinnamius, subcontíguos no grupo bellator; OMP-

OMP por um e meio a dois diâmetros; OMP-OLP por um e meio a três diâmetros dos

OMP; OLA-OLP subcontíguos. Chilum dividido, liso, glabro. Quelíceras curtas, com

cerca de um terço do comprimento da carapaça; não-geniculadas nos machos do grupo

bellator, pouco geniculadas nas fêmeas deste grupo e em ambos os sexos do grupo

gulosus; face frontal com granulações finas no grupo gulosus, mais grosseiras no grupo

bellator; retrolateral com estrias conspícuas (fig. 18); côndilo basal triangular;

retromargem do sulco subungueal com 4 a 6 dentes; garra com cerca de um terço do

comprimento das quelíceras. Enditos convergentes, promargem côncava, retromargem

mais escavada no grupo bellator do que no grupo gulosus. Lábio nitidamente mais

longo que largo, com cerca da metade do tamanho dos enditos. Esterno pouco mais

longo que largo, com poucos pêlos inseridos em tubérculos no grupo gulosus, mais

hirsuto, com pêlos näo-inseridos em tubérculos no grupo bellator; rebordo nítido; laterais

da margem anterior geralmente projetadas; escavações esternais ausentes.

Pernas longas, pouco robustas, com abundantes pêlos plumosos, modificados em

C. gulosus, com haste e ramificações achatadas (fig. 44); comprimento relativo 4123;

no grupo bellator, apenas a coxa I com pêlos inseridos em tubérculos; em C. gulosus,

todas as coxas com pêlos inseridos em tubérculos; em C. cinamius, todas as coxas com

pêlos näo-inseridos em tubérculos. Tíbia I com 4 a 6 pares de espinhos ventrais; metatarso

I com 2 pares de espinhos ventrais. Escópulas dos tarsos I e II muito ralas no grupo

gulosus, mais densas no grupo bellator; nos tarsos III e IV, ausentes; todos os tarsos

com cerdas espiniformes ventrais (fig. 28); metatarsos I e II com escópulas ralas desde

o terço proximal; Ill e IV com tufo de cerdas ventro-distais denso; unhas tarsais pouco

| pectinadas, com dentes curtos; pêlos subungueais densos e curtos; tricobótrias tarsais

“distribuídas em duas filas dorsais; unha do tarso do palpo da fêmea com dentes muito

curtos; trocanteres levemente recortados.

| Abdômen piloso, com cerdas longas eretas abundantes e densa cobertura de pêlos

plumosos; scutum dorsal apenas em machos, ocupando o terço anterior; scutum ventral

“ausente em ambos os sexos; tubérculo traqueal ausente. Cólulo desenvolvido, triangular,

coberto por pêlos simples.

| Palpo do macho. Tíbia com cerca da metade do comprimento do címbio no grupo

| gulosus (fig. 271); pouco maior que a metade do comprimento do címbio no grupo

bellator (fig. 275); ATR bilobada, PV presente, conspícuo no grupo gulosus (fig. 267);

“de difícil reconhecimento no grupo bellator, devido à ocorrência de múltiplos processos

no lobo ventral (figs. 276, 281). Címbio com PCr mais desenvolvido no grupo gulosus

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

98 BONALDO

do que no grupo bellator; PCp ausente. Subtégulo inteiro; fundus alargado, no subtegulo;

PTd pouco desenvolvida; reservatório curto, com apenas uma volta ventral em “S”

proximal; condutor hialino (figs. 267, 271, 275, 280); êmbolo de forma variável,

fusionado ao tégulo, com PEC desenvolvido no grupo bellator (figs. 276, 281), vestigial

em C. gulosus (figs. 262) e ausente em C. cinamius (fig. 271); DAC conspicua em C. |

cinamius (figs. 271, 272), visível apenas ao microscópio eletrônico em €. gulosus (figs. |

262-264) e ausente no grupo bellator. Epígino com duas aberturas de copulação |

posteriores pequenas no grupo gulosus (figs. 265, 269, 273) e uma abertura de copulação

anterior ampla no grupo bellator (figs. 277, 282); vulva sem PVP no grupo gulosus,

com PVP no grupo bellator; no grupo gulosus, espermatecas primárias maiores que as |

secundárias; no grupo bellator, as primárias menores que as secundárias (figs. 270, |

274, 278, 279).

Elenco. Dezoito espécies:

Creugas annamae (Gertsch & Davis), comb. nov. - México.

Corinna annamae GERTSCH & Davis, 1940 (holótipo AMNH, examinado).

Creugas apophysarius (Caporiacco), comb. nov. - Guiana.

Corinna apophysaria Caporiacco, 1947 (tipos não-examinados).

Creugas bajulus (Gertsch), comb. nov. - México.

Corinna bajula GERTSCH, 1942 (holótipo CAS, näo-examinado).

Creugas bellator (L. Koch), comb. nov. (päg. 105).

Creugas berlandi nom. nov. (päg. 104).

Creugas bicuspis (F.O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - Mexico.

Corinna bicuspis F.O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899 (holötipo BMNH, examinado).

Creugas cinnamius Simon, comb. restaur. (päg. 102).

Creugas epicureanus (Chamberlin), comb. nov. - Mexico.

Corinna epicureana CHAMBERLIN, 1924 (holótipo CAS, não-examinado).

Creugas falculus (F. O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - México.

Corinna falcula F.O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899 (holótipo BMNH, examinado).

Creugas gulosus Thorell, comb. restaur. (pág. 99).

Creugas lisei sp. nov. (pág. 106).

Creugas mucronatus (F.O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - Panamá. |

Corinna mucronata F.O. PrckarD-CAMBrIDGE, 1899 (síntipos BMNH, examinados). |

Creugas nigricans (C. L. Koch), comb. nov. - México. |

Corinna nigricans C. L. Koch, 1842 (holötipo ZMB, examinado).

Sparassus nigricans; WALCKNAER, 1847.

Creugas navus (F.O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - Mexico.

Corinna nava EO. PicKARD-CAMBRIDGE, 1899 (holötipo BMNH, examinado).

Creugas plumatus (L. Koch), comb. nov. - Colômbia.

Hypsinotus plumatus L. KocH, 1866 (holötipo BMNH, examinado).

Corinna plumata; PETRUNKEVITCH, 1911.

Creugas praeceps (F. O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - México.

Corinna praeceps F.O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899 (holötipo BMNH, examinado).

Creugas silvaticus (Chickering), comb. nov. - Panamá.

Corinna silvatica CHIcKERING, 1937 (parátipo, MCZ, examinado).

Creugas uncatus (F.O. Pickard-Cambridge), comb. nov. - Mexico.

Corinna uncata F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899 (síntipos BMNH, examinados).

Grupogulosus

Diagnose. Olhos subiguais em tamanho, OMA pouco maiores que os demais (fig.

I) Äpice do êmbolo com DAC, com ou sem PEC (figs. 262-264, 267, 271). Epigino

com duas aberturas de copulacäo e septo transversal mediano (figs. 265, 266, 273);

espermatecas primärias maiores que as secundärias; PVP ausente (figs. 270, 274).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 99

Creugas gulosus Thorell, comb. restaur.

(Figs. 5, 6, 18, 28, 44, 106, 107, 261-270)

| Creugas gulosus THORELL, 1878:175 (holótipo 2j, Ambon, Indonésia, Museo Civico di Storia Naturale “Giacomo

Doria”, Gênova, examinado por C. Deeleman-Reinhold).

| Creugas senegalensis Simon, 1885:376 (holötipo®, Dakar, Senegal, MNHN 4880, examinado). Syn. nov.

| Phanoptilus sericeus THORELL, 1887:41 (síntipos S, Bhamo, Myanmar,2j, Ambon, Indonésia, Museo Civico di

Storia Naturale “Giacomo Doria”, Gênova, examinados por C. Deeleman-Reinhold). Sinonimizado com

Creugas gulosus por THORELL, 1897:243.

| Hypsinotus gracilipes KEYSERLING, 1887:448, pr. 6, fig. 19 (holótipoS, Haiti, MCZ, näo-examinado). Syn. nov.

| Creugas cetratus Simon, 1889:243 (holótipo 4, Nova Caledônia, näo-encontrado no MNHN, provavelmente

perdido).Syn. nov.

| Pranopis punctata THORELL, 1891:21 (holótipo &, Ilhas Nicobar, não-examinado). Sinomizado com Creugas

| gulosus por THORELL, 1897:243.

| Corinna consobrina Simon, 1897b:887 (sintipos 2, MNHN 18978; 2, j, BMNH 1894.9.18-133, Island of Saint

| Vincent, examinados). PETRUNKEVITCH, 1911:456;RoEWER, 1954:596;Bonner, 1956:1210.Syn. nov.

Corinna senegalensis; Simon, 1898:196; 1909:384, fig. 16; ROEWER, 1954:593; Bonner, 1956:121 6; WUNDERLICH,

| 1987:234, fig. 653; 1992:472, fig. 732.

| Corinna gulosus; SIMON, 1898:196 (lapsus).

| Corinna cetrata; Simon, 1898:196; BERLAND, 1924:422, fig. 3: 1933:50, figs. 17-21; RoEWER, 1954:594: BONNET,

1956:1210.

| Corinna nervosa F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899:70, pr. 5, fig. 9 (holótipoS, Bugaba, Chiriqui, Panamá, F. D.

Godman, BMNH, examinado); PETRUNKEVITCH, 191 1:465; ROEWER, 1954:598; Kraus, 1955:47, fig. 124;

| Bonner, 1956:1214. Syn. nov.

Corinna gracilipes; PETRUNKEVITCH, 191 1:466; BRYANT, 1933:192, pr. 3, fig. 32 (alótipo S, Miami, Flórida, USA,

VII.1916, MCZ, examinado); RoEwER, 1954:497: BonnET, 1956:1211.

Corinna tahitica STRAND, 1913:120; 1914:252, pr. 18, fig. 93 (sintipos O, 9, Papeete, Tahiti, 02.VI1.1909, E.

| Wolf, SMF 4555, examinados): sinonimizado com Corinna cetrata por BERLAND, 1924:233.

| Corinna abnormis PETRUNCKEVICH, 1930:103, fig. 86 (holótipo &, Peabody Museum, New Haven, não-

| examinado);ROEWER, 1954:594; Bonner, 1956:1208.Syn. nov.

Corinna wolleboeki Banks, 1931:273, pr. 1, fig. 4 (holötipo C', Museu Zoológico da Universidade de Oslo, Oslo;

parátipo ?, MCZ, Isla San Cristóbal, Galápagos, Equador, 28.X11.1925, A. Wollebaek, näo-examinados);

ROEWER, 1954:601; BonnET, 1956:1217.Syn. nov.

| Corinna antillana Bryant, 1942:351, pr. 3, fig. 33 (holótipo 2, Saint Croix, Ilhas Virgens, MCZ, näo-examinado);

ROEWER, 1954:594. Syn. nov.

| Corinna inornata Kraus, 1955:46, pr. 7, fig. 123 (holótipo 9, Finca San Jorge, Santa Ana, El Salvador, 24.V.1951,

A. Zilch, SMF 8269/1; epígino em lâmina de microscopia, examinado); BrIGNOLI, 1983:556. Syn. nov.

Corinna gulosa; ROEWER, 1954:594; Bonner, 1956:1212.

| Nota. A identidade desta espécie foi reconhecida através de desenhos do holótipo

| de Creugas gulosus e dos sintipos de Phanoptilus sericeus, gentilmente cedidos pela

| Dr C. Deeleman-Reinhold. As sinonímias dos nomes cujos tipos estão perdidos ou não

foram examinados, justificam-se pelo exame de material proveniente de regiões próximas

às localidades-tipo e pelo estudo das descrições originais e posteriores.

Diagnose. Machos de Creugas gulosus diferem dos de C. cinamius pelo PCr do

palpo com uma projeção posicionada entre os lobos da ATR; êmbolo alongado, PEC

vestigial, na margem prolateral; DAC com processos parcialmente fusionados (figs.

261-264, 267, 268); fêmeas diferem pelo epígino com aberturas de copulação posicionadas

nas laterais da placa epiginal (figs. 265, 269); espermatecas primárias subquadrangulares

(figs. 270).

| Descrição. Macho (Porto Alegre, Rio Grande do Sul). Carapaça e quelíceras

| castanho-avermelhadas escuras; enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados, pernas

castanhas; dorso do abdômen cinza, ventre amarelo.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

100 BonaLDO |

Comprimento total 7,7. Carapaça: comprimento 4,0, largura 3,1, altura 1,4: clípeo, altura 0,37. Olhos: fila

anterior 1,1, posterior 1,31; QOM: comprimento 0,44, largura anterior 0,6, largura posterior 0,56; diâmetros:

OMA 0,26, OLA 0,21, OMP 0,17, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,11, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,25, OMP-OLP 0,31, OLA-OLP 0,06. Quelíceras: comprimento 1,95; retromargem com 5 dentes subiguais,

separados. Esterno: comprimento 1,95, largura 1,85. Abdômen: comprimento 3,8, largura 2,4. Pernas: comprimento

relativo 4123. I - fêmur 3,3/ patela 1,35/ tíbia 2,95/ metatarso 2,8/tarso 2,1/total 12,5; I - 3,15/1,35/2,55/2,6/

2,0/11,65; III - 2,8/1,25/2,15/2,7/1,6/10,5; IV - 3,6/1,4/ 3,0/3,7/1,9/13,6. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1;

tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-0-1: tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, pO-

1-1,r0-1-1;tibiapl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-0-1; tíbia pl-

1,r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1, rl-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 261-264, 267, 268.

Fêmea (Porto Alegre, Rio Grande do Sul). Coloração como no macho.

Comprimento total 9,0. Carapaça: comprimento 3,6, largura 3,0, altura 1,7; clipeo, altura 0,29. Olhos: fila |

anterior 1,09, posterior 1,25; QOM: comprimento 0,46, largura anterior 0,58, largura posterior 0,55; diâmetros: |

OMA 0,25, OLA 0,21, OMP 0,17, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,25, OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,06. Quelíceras: comprimento 1,95: retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 1,9, largura 1,8. Abdömen: comprimento 5,4, largura 3,6. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 -

fêmur 3,25/ patela 1,4/ tíbia 2,85/ metatarso 2,55/ tarso 1,95/ total 12,0; II - 3,0/1,3/2,4/2,4/1,8/10,9; HH - 2,7/

1,25/2,05/2,5/1,55/10,05; IV - 3,5/1,35/2,9/3,45/1,8/13,0. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2-

2: metatarso v2-2. II - fêmur dl-1, p0-0-1: tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-1-1;

tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-0-1: tíbia pl-1, rl-1, v2-

2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epigino: figs. 265, 266, 269, 270.

Variação. Comprimento: (10 0) total 5,4-8,5, carapaça 3,1-4,9, fêmur I 2,2- 3,8; (109) total 6,7-9,3,

carapaça 2,8-4,3, fêmur I 2,4-3,5. No palpo do macho, o PEC varia em tamanho. k

Distribuição geográfica. Cosmopolita (Américas, Africa, sudoeste da Asia e

Polinésia).

Material examinado. ESTADOS UNIDOS. Hawai: Oahu Island, Wahiawa, &, H. R. Hagan (MCZ);

Honolulu, 2, V.1952, T.H. & M. S. Adachi (AMNH); Florida: Entre Stuart e Saint Augustine,9, 17-25.V1.1951,

O. Bryant (CAS); Homestead, 26, II.1968, A. M. Chickering (MCZ); Dade Co. (Deering State Park),S, 2, 21.II-

25.V11.1986, S. & J. Peck (AMNH); Monroe Co. (Key Largo), &, 01.VII-16.X1.1985, S. & J. Peck (AMNH);

(Pennekamp State Park), S, 02.VI-26.V1I1.1986, S. & J. Peck (AMNH); (Plantation Key), 2, 02.V.1951,H. V.

Weems Jr. (AMNH); (Little Duck Key), 25,9, 28.X.1963, J. & W. Ivie (AMNH); (Cudjoe Key),S, 2, 29.VII-

14.X11.1986, S. & J. Peck (AMNH); (No Name Key), 3 &, 03.VI-27.V11.1986, S. & J. Peck (AMNH); 3 6,

28.VII-13.X11.1986, S. & J. Peck (AMNH); (Big Pine Key), &, 30.VI-17.X1.1985, S. & J. Peck (AMNH);

(Sugarloaf Key), 45, 19, 03.V-03.VM. 1985, 19.X1.1985-06.VI. 1986, S. & J. Peck (AMNH). ILHAS BAHAMA.

Bimini, &, II-I.1948, C. Breder (AMNH); (South Bimini), 3 O, 43, V.1951; W. J. Gertsch & M. A. Cazier

(AMNH); S, V1.1951, M. A. Cazier (AMNH); 2 6, VI.1951, M. A. Cazier, C. & P. Vaurie (AMNH). CUBA.

Soledad, 2, 15.V1.1925, G. Salt (MCZ);S, IV.1936, Darlington (MCZ); Mina Carlota (Trinidad Montains); 2,

10-15.VII, Parsons (MCZ); Pinar del Rio: Serra de Anafe, &, 09.11.1947, M. Barro (AMNH); La Habana:

Habana (Vedado),S, X1.1926, G. Aguayo (AMNH); (Universidad), S, 2, 5-6.X1.1915 (AMNH); Camagiiey: 9,

1954, J. T. Acosta (AMNH). ILHAS CAYMAN. Grand Cayman, Georgetown, 2C,, 17.1V.1938, C. B. Lewis &G.

H. Thompson (BMNH 1939.7.25.16-17); 9, 15.VI11.1938 (AMNH). JAMAICA. Saint Catharine: Spanish

Townd,, 29, 09- 10.VIN.1957, A. M. Chickering (MCZ); Saint Andrew: Kingston (Kingston Science Museum),

38,29, 3], 30.IX.1957, A.M. Chickering (MCZ); (Institut of Jamaica Garden), 20,9, 127, 21.VIL.1954, A.M.

Chickering (MCZ); Old Hope Road, S, 03.X11.1963, A. M. Chickering (MCZ); Saint Thomas: Rosalle Falls, 9,

11.X1.1957, A. M. Chickering (MCZ). PUERTO RICO. Palomino Island, 4, 07.X1.1964, H. Heartwole & F.

Mckenzie (AMNH); Mayagüez: 9, 23.11.1962, D. Pabon (AMNH); San Germán, &, 9, II. 1962, D. Nazario

(AMNH); Penuelas, 29, 19.1V.1962, L. Piazza (AMNH). SAINT THOMAS. 6, 03.11.1964, A. M. Chickering

(MCZ); Little Hans Lollick Island, 2, 05.1V.1966, University of Puerto Rico (AMNH). SAINT JOHN. 9,

18.XII. 1965, University of Puerto Rico (AMNH). TORTOLA. Sandy Key, 2, 31.VIII.1965, H. & A. Heartwole

(AMNH); Guana Island, 2, 02.VII.1965, University of Puerto Rico (AMNH). SAINT CROIX. 26, 01.11.1915 |

(AMNH). SAINT MARTIN. Philipsburg, &, 09.11.1968, B. Malkin (AMNH). SAINT KITTS. 39,3 92,65, 14-

22.1X.1966, A. M. Chickering (MCZ). GRANADA. Saint Georges, 5, 03.VI.1950, L. Isaacs (AMNH). MEXICO.

Nuevo Leon: Monterrey, &, 23.V.1952, M. Cazier, W. Gertsch & R. Schrammet (AMNH); Sinaloa: Mazatlán,d, |

H. Edwards (AMNH); (20 mi. E Mazatlán), 2, 05.VII.1956, W. Gertsch & V. Roth (AMNH); San Luis de

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

101

ısorm oaddılı)

| Figs. 261-266. Creugas gulosus Thorell: 261, apófise tibial retrolateral e processo cimbial basal, retrolateral;

| 262, ápice do bulbo, ventral; 263, ápice do êmbolo e condutor, ventro-prolateral; 264, ápice do êmbolo (condutor

| removido), retrolateral; 265, epígino, ventral; 266, epigino, posterior. Abreviaturas: AC, abertura de copulacäo;

| C, condutor; DAC, divisão apical do êmbolo de Creugas; LD, lobo dorsal da apófise tibial retrolateral; LV, lobo

ventral da apófise tibial retrolateral; PCr, processo cimbial basal retrolateral; PEC, processo embolar mediano de

Creugas.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

102 BONALDO

Potosí: Valles (Hotel Covadonga),S, 1961, L. Steude (AMNH); Queretaro: Queretaro,®, S. A. Minton (AMNH);

Distrito Federal: Cidade do México, 2, VIII.1947, B. Malkin (AMNH); Colima: 2 mi. S Tonila, 49, 39, 6),

28.VIII.1965, Gertsch & Hastings (AMNH). EL SALVADOR. Los Cóbanos (Meereshihe), 2, XT.1951, A. Zilch

(SMF 8225); San Salvador, 4 &, 9, 23.IV, 05.V, 27.VI, XI.1951, A. Zilch (SMF 8214-8217). PANAMÁ. 9

(BMNH 1916.6.1-798). VENEZUELA. Distrito Federal: Caracas (El Paraiso),C', 06.VI.1981, R. Noväes (CPS

259); (El Marqués, Quinta Ninina), S, 10.V.1981, M. A. Gonzales-Sponga (CPS 172); (El Manicomio), &,

27.IV.1981, N. Mopollon (CPS 154); Sucre: Myios (Marequitan),2, VII.1981, A. Campos (CPS 725); Otto (La

California),S, VI.1981,G.D. Atanacio (CPS 355); Mérida: ? (SMF 640). COLÔMBIA. Antioquia: Medellín

(1560 m), &, 10.X1.1984, M. A. Serna (MCZ); Valle del Cauca: Cali, S, 1.1964, P. B. Schneble (MCZ); &,

IX.1969, W. Eberhard (MCZ); Hacienda El Paraiso, &, 26.X11.1980, A. Roig (MACN). EQUADOR. Ilhas |

Galápagos, Ilha de Santa Cruz (Horneman Ranch), 2 6, 5 9, 16.11..1964, Q. D. Cavagnars & R. O. Schuster À

(CAS); (Academy Bay)9, 10-13.V.1985, S. & J. Peck (AMNH); Guayaquil,S, 1.1943 (CAS); Isla Puná, O, 23- |

26.1.1941 (CAS); 2, 16.V.1942 (CAS); &, 09.X1.1950. E. S. Ross (CAS). PERU. Piura: El Alto (2,5 Km SE

Cabo Blanco), S, 02.1.1942, R. Walls (AMNH); Negritos, 2, 03.X.1938 (CAS); ®, XII. 1940 (CAS); La Libertad:

Trujillo (Hacienda Cartavio), 2, VI-VII. 1939, W. Weyraunch (AMNH); Cajamarca: Nanchoc Quebrada, &,

21.X11.1984-17.1.1985, J. M. Carpenter (MCZ); Lima: Chancay (Loma Lachay),9, 02.11.1954, E. I. Schilinger

& E. S. Ross (CAS). BRASIL. Ilha de Trindade (Vale, O do Pico Desejado e S do Pico Trindade), &, 2, 02.11.1966,

J. Becker (MNR]J); Amazonas: Manaus (Praça 14),5, X.1992,M. E. Oliveira (UA); Paraíba: S (UFPB); João

Pessoa, 2 (UFPB 135):9, 02.VII.1978, P. F. L. Duarte (UFPB 362); 2, 10.X.1979, M. H. Marcondes (UFPB);

Pernambuco: Olinda, 26,9, A. E. Coelho (UFPB s/nº: 303); Recife, 25 (SMF); Rio de Janeiro: Rio de Janeiro

(Santa Tereza), S, XI[.1945, H. Sick (AMNH); São Paulo: Descalvado (Vassununga), 2, 04.H1-05.1V.1941,

Schubart (MZSP 6376); Rio Claro,9, X.1942 (MZSP 10384);9, 19.11.1944, J. Gaspar (MZSP 7081); Americana,

30,2%, 15.V1.1944, R. Eller (MZSP 12538); Botucatú, 26,92, V.1947, Werner (MZSP 12539); São Paulo, 26,

10.1.1963, S. Santos (MZSP 10503):S, XII.1963 (IBSP 1865);9, X1.1989, A. Serra (MZSP 10537); (Jabaquara),

2,09:1.1991,S. T. P. Amarante (MZSP 12777); (Ipiranga),9, 19.1V.1942, J. Barroso (MZSP 8365); Santa Catarina:

Porto Belo (Ilha João da Cunha), 26, 23, 25.X.1986, A. A. Lise (MCN 15943); Corupá, 2, I-II.1949, A. Maller

(AMNH); Rio Grande do Sul: Canela, 9, 01.1.1966, A. A. Lise (MCN 8991); Lajeado, &, 12.VIL.1987, E. H.

Buckup (MHCI); General Câmara, S, 16.11.1991, M. Di Bernardo (MCTP 81); Viamão, S, 03.X.1973, H. F. Fernandes

(MCN 3919); Porto Alegre, &, 08.VII.1959, L. Meyer (MCTP 3916);9, 26.1.1952, C. A. Hartlieb (MCN 1735); 3

S, 05.11.1966, 07.1, 05.V.1980, A. A. Lise (MCN 113, 8991, 9055); 2 S, 03.11.1990, J. L. M. de Souza (MEN

19626); S, 18.1.1992, A. D. Brescovit (MCN 21954); 79,79,27, 08.X11.1993, TV.1996, 01.1.1997, M. A. L.

Marques (MCN 24491, 27695, 28942); 05.1.1994, R. Rosa (MCN 24723); (Vila Cruzeiro),S, 15.1X.1986, E. H.

Buckup (MCN 16907); (Bela Vista), &, 21.X.1986, E. Kamas (MEN 15929). SERRA LEOA. Freetown, &, 9

(MNHN 10713). NIGÉRIA. Jos, &, X-XII.1965 (MRAC 130619). CAMARÕES. Galim, &, 13-20.VII.1971, F.

Puylaert (MRAC 141387). ZAIRE. Tshopo: Avakubi (01°19’ N, 27° 33º E), ©, Dehaize (MRAC). ILHAS

SEYCHELLES. Ile aux Vaches, 9, 15.VII.1972, P. L. G. Benoit & J. J. Van Mo (MRAC 143426). ILHAS |

MARQUESAS. Nuka Hiva,9, 1.1925, P. H. Jonson (BMNH 1926.1.24.341-345). Ua Huka,&, 18.11.1931 (MNHN);

Hiva Oa (Atuona),S, 02.VII.1929 (MNHN). ILHAS SAMOA: Apia,S, B. J. Marples (BMNH 1974.189).

Creugas cinnamius Simon, comb. restaur.

(Figs. 271-274)

Creugas cinnamius Simon, 1888:210 (sintipos S, 39, México, MNHN 455, examinados, presente designação de

lectótipo2 e paralectótipos &, 29).

Corinna cinnamia; Simon, 1897a:197; F. O. PrexarD-CAaMBRIDGE, 1899:67, pr. 5, fig. 9: PETRUNKEVITCH, |

1911:465; Roewer, 1954:596; Bonner, 1956:1210.

Nota. Simon (1888) descreveu apenas a fêmea desta espécie, apesar da

disponibilidade de um macho na série sintípica. Os abdômens, tanto do paralectótipo

macho como o do outro macho disponível, estão perdidos.

Diagnose. Machos de Creugas cinnamius diferem dos de C. gulosus pela PCr do

palpo do macho sem projeção; êmbolo compacto, sem PEC; DAC com processos näo-

fusionados (figs. 271, 272); fêmeas diferem pelo epígino com aberturas de copulação

posicionadas na região mediana da placa epiginal, próximas ao septo transversal mediano;

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 103

Figs. 267-274. Creugas gulosus Thorell: 267, palpo, ventral; 268, palpo, retrolateral; 269, epígino, ventral; 270,

“epígino, dorsal; C. cinamius (Simon): 271, palpo, ventral; 272, palpo, retrolateral; 273, epígino, ventral; 274,

epígino, dorsal. Todas as figuras na mesma escala (barra, 0,25 mm).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

104 BONALDO

espermatecas primärias globulares (figs. 273, 274).

Descrição. Macho (paralectótipo). Carapaça e queliceras castanho-avermelhadas;

enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados claros; pernas amarelas (pernas IV |

perdidas); abdômen perdido.

Comprimento total (?). Carapaça: comprimento 3,8, largura 2,95, altura 1,35; clipeo, altura 0,23. Olhos:

fila anterior 0,92, posterior 1,13; QOM: comprimento 0,36, largura anterior 0,45, largura posterior 0,45; diâmetros:

OMA 0,18, OLA 0,18, OMP 0,12, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,14, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,21, OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,09. Quelíceras: comprimento 1,65; retromargem com 5 dentes subiguais,

subcontíguos. Esterno: comprimento 2,0, largura 1,75. Pernas: I - fêmur 3,0/ patela 1,55/ tíbia 2,7/ metatarso |

2,45/tarso 1,9/total 11,6; II - 2,75/1,4/2,3/2,3/1,75/10,5; HI - 2,6/1,3/2,05/2,4/1,5/9,85; IV - perdidas. Espinulação: |

I- fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-1-1; tíbia vlr-2-2: metatarso v2-2. HI |

- fêmur d1-1-0, p0-1-1, r0-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1, rl-1-1, v2-2-1. IV - perdida. Palpo: .

figs. 271, 272.

Fêmea (Cuernavaca, Morelos). Coloração como no macho; abdômen amarelo,

com manchas acinzentadas.

Comprimento total 7,9. Carapaça: comprimento 3,75, largura 3,0, altura 1,3; clípeo, altura 0,24. Olhos:

fila anterior 1,05, posterior 1,26; QOM: comprimento 0,37, largura anterior 0,47, largura posterior 0,47; diâmetros:

OMA 0,17, OLA 0,2, OMP 0,13, OLP 0,15; interdistâncias: OMA-OMA 0,17, OMA-OLA 0,12, OMP-OMP

0,21, OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,11. Quelíceras: comprimento 1,8; retromargem com 6 dentes subcontíguos, o

primeiro menor. Esterno: comprimento 1,95, largura 1,8. Abdômen: comprimento 4,35, largura 2,4. Pernas:

comprimento relativo 4123. 1 - fêmur 2,95/ patela 1,55/ tíbia 2,5/ metatarso 2,15/tarso 1,8/total 10,95; I - 2,75/

1,45/2,25/2,05/1,65/10,15; III - 2,5/1,35/1,95/2,2/1,4/9,4; IV - 3,3/1,55/2,9/3,3/1,7/12,75. Espinulação: I - fêmur

d1-1, p0-0-1:; tíbia vlp-2-2-2; metatarso v2-2. II- fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v1r-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur

d1-1-0, p0-1-1,r10-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1, rl-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-0, p0-1-1, r0-

0-1: tíbia pl-1, r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epigino: figs. 273, 274.

Variação. Comprimento: (25, abdômens perdidos), carapaça 3,0-3,8, fêmur 12,7-3,0; (69) total 6,8-9,3,

carapaça 3,4-3,8, fêmur I 2,5-2,9. Nas fêmeas, o septo transversal mediano do epígino varia em largura.

Distribuição geográfica. México central.

Material examinado. MÉXICO. Morelos: Cuernavaca, 29, 2 1, X.1944, N. L. H. Krauss;9, j, 27.VIL.1956,

W. Gertsch & V. Roth; Alpoyeca, 9, 28.VII.1956, W. Gertsch & V. Roth; Cocoyoc,&S, 28.VIL.1956, W. Gertsch &

V. Roth (todos depositados no AMNH).

Grupo bellator

Diagnose. OMA nitidamente maiores que os demais. Embolo sem DAC, com

PEC desenvolvido (figs. 275, 280). Epígino com uma abertura de copulação anterior

ampla, sem septo transversal mediano (figs. 277, 282); espermatecas primárias menores

que as secundárias; PVP presente (figs. 278, 283).

Creugas berlandi nom. nov.

Corinna bellatrix; BERLAND, 1913:98, pr. 10, figs. 67-69 non Hypsinotus bellator L. Koch, 1866 (&, Santo

Domingo de los Colorados, Equador, 1905, G. Rivet, MNHN, examinado, identificação errônea).

Corinna bellatrix Scamipr, 1971:401, fig. 8 (C, 2 9, Equador, coletados no porto de Hamburgo, ZMB,

examinados); PLATNICK, 1993:619.

Etimologia. O nome específico é um patronímico em homenagem a L. Berland, o

primeiro autor a ilustrar um espécime desta espécie.

Nota. BERLAND (1913) ilustrou um macho que identificou como Corinna bellatrix

(L. Koch, 1866), retificação do nome Corinna bellator (L. Koch), espécie originalmente

descrita em Hypsinotus. SCHMIDT (1971) descreveu fêmeas associadas a um macho da

mesma espécie ilustrada por Berland e atribuiu a autoria de Corinna bellatrix a BERLAND

(1913), comentando que seus espécimes e o de Berland, não são co-específicos com

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 105

Hypsinotus bellator L. Koch. O nome dado por Berland é inválido por se tratar de uma

identificação errônea. Assim, a autoria desta espécie deve ser atribuída a ScHmipr (1971).

O exame do holótipo de Hypsinotus bellator L. Koch e dos espécimes estudados por

BERLAND (1913) e ScHmipr (1971) indicou que se trata realmente de duas espécies, ambas

do gênero Creugas. De acordo com Bonner (1956:1209), o nome bellatrix é a forma

feminina do nome bellator. Desta forma, para evitar o estabelecimento de uma homonimia

em Creugas, torna-se necessária a proposição de um nome novo para a espécie ilustrada

por BERLAND (1913) e descrita por SCHMIDT (1971).

Creugas bellator (L. Koch), comb. nov.

(Figs. 108, 109, 275-279)

Hypsinotus bellator L. Koch, 1866:278, pr. 11, figs. 177, 178 (holötipo 9, Nova Granada, provavelmente

Colômbia, BMNH 1890.7.1/1228, examinado); BERTKAU, 1870:108.

Corinna bellator; PETRUNKEVITCH, 191 1:464: RoEWER, 1954:595 (lapsus).

Corinna bellatrix; BONNET, 1956:1209.

Diagnose. Machos de Creugas bellator diferem dos de C. lisei pelo palpo do

macho com o lobo dorsal da ATR reduzido a um pequeno processo pouco esclerotinizado;

lobo ventral grande, com um processo mediano e três apicais; êmbolo com PEC laminar,

inserido ventralmente; ápice do êmbolo abruptamente afilado (figs. 275, 276); fêmeas

diferem pela margem posterior da abertura de copulação levemente recurva, reta ou

procurva; ducto copulatório, visível por transparência, largo (figs. 277-279).

Descrição. Macho (Finca Bela Vista, Cundinamarca). Carapaça, quelíceras, enditos

e lábio castanho-avermelhados, esterno amarelo, bordas castanhas, pernas amarelas,

abdômen cinza, ventre mais claro.

Comprimento total 9,9. Carapaça: comprimento 4,6, largura 3,9, altura 1, 75: clipeo, altura 0,4. Olhos: fila

anterior 1,47, posterior 1,64; QOM: comprimento 0,77, largura anterior 0,87, largura posterior 0,8; diâmetros:

OMA 0,4, OLA 0,27, OMP 0,27, OLP 0,27; interdistâncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,32, OMP-OLP 0,37, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 2,35; retromargem com 5 dentes iguais, separados.

Esterno: comprimento 2,45, largura 2,25. Abdômen: comprimento 5,3, largura 3,2. Pernas: comprimento relativo

4123. 1 - fêmur 4,4/ patela 1,9/ tíbia 3,8/ metatarso 3,5/ tarso 2,15/ total 15,75; II - 4,3/1,8/3,5/3,4/2,0/15,0; HI

-4,0/1,6/3,1/3,4/1,7/13,8; IV - 4,8/1,8/3,9/4,9/1,9/17,3. Espinulação: I - fêmur dl-1-1, p0-1-1; tíbia v2-2-2-2-2;

metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1; tíbia v2-1r-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1,r0-1-1-1;

tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-0-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-0-1-1: tíbia pl-1,r1-1,

| v2-2-2: metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 275, 276.

Fêmea (Finca Bela Vista, Cundinamarca). Coloração como no macho.

Comprimento total 10,5. Carapaça: comprimento 4,4, largura 3,6, altura 1,8; clípeo, altura 0,37. Olhos:

fila anterior 1,4, posterior 1,55; QOM: comprimento 0,72, largura anterior 0,82, largura posterior 0,73; diâmetros:

OMA 0,35, OLA 0,27, OMP 0,25, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

| 0,27, OMP-OLP 0,32, OLA-OLP 0,05. Quelíceras: comprimento 1,05; retromargem como no macho. Esterno:

| comprimento 2,25, largura 2,15. Abdômen: comprimento 5,8, largura 3,6. Pernas: comprimento relativo 4123.1

- fêmur 4,0/ patela 1,7/tíbia 3,4/ metatarso 2,9/ tarso 1,9/ total 13,9; II - 3,8/1,6/3,0/2,8/1,8/13,0; III - 3,5/1,5/

2,8/3,2/1,6/12,6; IV - 4,3/1,6/3,6/4,2/1,8/15,5. Espinulação: I- fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso

v2-2. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1,r0-1-1; tíbia pl-1,rl-

| 1,v2-2-2: metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-0-1-1; tíbia p1-1,rl-1, v2-2-2; metatarso

- pl-1-1,12-1-1, v2-2-1. Epigino: figs. 277, 278.

| Variação. Comprimento: (106) total 8,2-12,0, carapaça 3,9-6,1, fêmur 1 4,0-5,6; (109) total 10,5-11,9,

carapaça 4,2-5,4, fêmur 14,2-4,9. Em alguns machos, o processo apical curvo da ATR não apresenta o dente basal;

em outros, ocorrem 2 dentes basais. Nas fêmeas, a margem da abertura de copulação do epígino varia de levemente

recurva (fig. 277) a procurva (fig. 279).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

106 BONALDO

Distribuicäo geogräfica. Noroeste da America do Sul.

Material examinado. VENEZUELA. Mérida: 29 (SMF 5592, 5593); Mérida, S, 22, TV.1939, Vellard

(MACN); Rivas Dávila (Carretera Bailadores, Päramo de La Lupra, 2340 m),S,9, 03.1X.1981, M. A. Gonzales-

Sponga (CPS 517); Campo Elias (Carretera Mérida, Jají, 1781 m), 29, 30.VIII.1981, M. A. Gonzales-Sponga

(CPS 522); Las Piedras (Rangel, Central Hidroelétrica José Antonio Päez),?, 05.1X.1981, A. R. Delgado & M. A.

Gonzales-Sponga (CPS 794). COLÖMBIA. 9, S. A. Dualle (AMNH); Boyaca: Villa de Legua, 9, 09.1.1989, C.

Valderrama (CLP); Cundinamarca: Sasaima (Finca Bella Vista), &, 29, 07.IV.1965P.R. & D.L. Craig (CAS);

S, 14.1V.1965, P.R. Craig (CAS); 3 Km S Chipaque, S, 30.VI1.1967, P. & B. Wygodzinsky (AMNH); Distrito

Especial: Santa Fé de Bogotá, S (MNRJ 1185); Huila: 10 Km E Santa Leticia (Finca Merenberg),&, 11.1979,

W. Eberhard (MCZ); Narino: Santiago, &, 01.11.1955, E. I. Schlinger & E. S. Ross (CAS). EQUADOR.

Tungurahua: Banos (1600 m),9, 16-17.X1.1937, W. C. Macintyre (AMNH); 9, VIL-VII. 1938, W. C. Macintyre

(MCZ); 9, 07.V.1942 (CAS); 26, 15-21 .1V.1943 (CAS); S, 29, 26.X1.1980, A. Roig (MACN); Rio Pastaza

(1700 m), 2.9, 04.X1.1937, W. Carke & W. C. Maclntyre (AMNH); Azuaz: Cajon (Cuenca-Loja, Km 94, Rio

León, 2200 m),9, 2 j, 11.1965, L. Pena (MCZ).

Creugas lisei sp. nov.

(Figs. 280-283)

Holótipo 5, São Francisco de Paula, Rio Grande do Sul, Brasil, 21-24.111.1996, A.

A. Lise et al. (MCTP 9843).

Etimologia. O nome específico é uma homenagem ao Prof. Dr. Arno Antonio

Lise, pioneiro da araneologia no Rio Grande do Sul.

Diagnose. Machos de Creugas lisei diferem dos de C. bellator pelo palpo com o

lobo dorsal da ATR grande e esclerotinizado; lobo ventral composto por quatro processos

de inserção basal; êmbolo com PEC afilado, inserido subapicalmente na margem

prolateral; ápice do êmbolo gradativamente afilado (figs. 280, 281); fêmeas diferem

pela margem posterior da abertura de copulação sinuosa; ducto copulatório, visível por

transparência, estreito (figs. 282).

Descrição. Macho (São Francisco de Paula, Rio Grande do Sul). Carapaça castanho-

clara, mais escura na região cefálica; quelíceras castanho-avermelhadas escuras; enditos

e lábio castanho-avermelhados; esterno amarelo, bordas castanhas; pernas amarelas;

dorso do abdômen cinza-escuro, metade posterior com uma faixa longitudinal amarela

de onde partem quatro pares de listras transversais decrescentes em tamanho no sentido

ântero-posterior; ventre amarelo.

Comprimento total 11,5. Carapaça: comprimento 6,2, largura 5,0, altura 1,7; clípeo, altura 0,5. Olhos: fila

anterior 1,75, posterior 1,95; QOM: comprimento 0,9, largura anterior 1,05, largura posterior 0,85; diâmetros:

OMA 0,45, OLA 0,35, OMP 0,3, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP 0,35,

OMP-OLP 0,4, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 2,5; retromargem com 4 dentes iguais, separados. Esterno:

comprimento 3,0, largura 2,9. Abdômen: comprimento 5,5, largura 3,2. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 -

fêmur 6,4/ patela 2,7/tíbia 6,3/ metatarso 5,6/ tarso 3,2/ total 24,2; II - 6,3/2,7/5,6/5,4/3,0/23,0; II - 5,9/2,5/4,9/

5,7/2,7/21,7;, IV - 7,2/2,6/6,5/8,1/2,8/27,2. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia v2-2-2-2-2-2; metatarso

v2-2. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1: tíbia vlp-2-2-2-2: metatarso v2-2. III - fêmur dl-1-1, pO-1-1-1,r0-1-1-1; tíbia pl-

1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-0-1, r0-0-1-1; tíbia pl-1,rl-1,v2-2-2;

metatarso p1-1-1,rl-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 280, 281.

Fêmea (São Francisco de Paula, Rio Grande do Sul). Coloração como no macho.

Comprimento total 12,4. Carapaça: comprimento 6,0, largura 4,9, altura 1,6; clípeo, altura 0,45. Olhos:

fila anterior 1,6, posterior 1,85; QOM: comprimento 0,85, largura anterior 0,95, largura posterior 0,9; diâmetros:

OMA 0,4, OLA 0,3, OMP 0,3, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP 0,35,

OMP-OLP 0,35, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 2,6; retromargem como no macho. Esterno: comprimento

2,9, largura 2,8. Abdômen: comprimento 6,1, largura 3,9. Pernas: comprimento relativo 4123. I - fêmur 5,7/

patela 2,7/ tíbia 5,5/ metatarso 4,7/ tarso 2,9/ total 21,5; II - 5,7/ 2,6/5,0/4,5/2,7/20,5; HI - 5,3/2,4/4,3/4,7/2,3/

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 107

Figs. 275-283. Creugas bellator (L. Koch): 275, palpo, ventral; 276, palpo, retrolateral; 277, epígino, ventral

(Cundinamarca); 278, epígino, dorsal; 279, epigino, ventral (Mérida); C. lisei sp. nov.: 280, palpo, ventral; 281,

palpo, retrolateral; 282, epígino, ventral; 283, epígino, dorsal. Todas as figuras na mesma escala (barra, 0,5 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

108 BONALDO

19,0; IV - 6,5/2,5/5,6/6,7/2,5/23,8. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia v1p-2-2-2-2-2; metatarso v2-2. II

- fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur dl-1-1, p0-1-1-1,r0-1-1-1: tíbia pl-1, rl-1,

v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-0-1,r0-0-1-1: tíbia p1-1,rl-1, v2-2-2; metatarso

pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epigino: figs. 282, 283.

Variação. Comprimento: (106) total 8,4-11,8, carapaça 4,2-6,3, fêmur 14,5-6,5: (109) total 10,2-14,8,

carapaça 4,8-6,1, fêmur 1 4,9-5,9. Espécimes capturados logo após a muda apresentam carapaça e pernas amarelo-

pálidas, com manchas oliväceas; queliceras oliváceas e enditos, lábio e esterno amarelo-pálidos; em alguns

exemplares o dorso do abdômen tem seis listras tranversais posteriores; em vários machos, o PEC está quebrado:

em poucos casos, a projeção tegular subapical está ausente ou deslocada retrolateralmente.

Distribuição geográfica. Sudeste e sul do Brasil (um registro isolado na Paraíba);

nordeste da Argentina e Uruguai.

Material-tipo. Parátipos: BRASIL. São Paulo: Campos do Jordäo,?, 15.X11.1944, F. Lane (MZSP 12586);

Mogi das Cruzes, S, 2, VIII. 1976 (MZSP 12588); Paraná: Rio Azul (Santo Afonso), O, 2, A. Cutio (MNRJ

13196); Jundiaí do Sul, 2, 03.X1.1986, Equipe Profaupar (MCN 20706); Curitiba (Rincão),9, VI.1949, Gofferge

(MZSP 11927); Santa Catarina: Piratuba,S, 12.X.1993, A. P. Lopes (MCN 24830); Rio Grande do Sul: Iraí,

29,1, 20.X1.1975, A. A. Lise (MCN 3110); São Borja, 2, 03-12.1.1989, Projeto Garabí (MCTP 517); São Francisco

de Paula, 2 2, 19.1V.1995, R. Ott (MCTP 6126); 2, 30.V-02.VI. 1996, A. A. Lise et al. (MCTP 9892): Bento

Gonçalves, 2, 27.1V.1991, M. D. Bernardi (MCTP 963); Caxias do Sul (Vila Oliva), 2, 04.1V.1975, €. J. Becker

(MCN 2743); Garibaldi, S, 28.VII.1974, O. Simonaggio (MCN 2384); Canela,®, 31.X11.1973, A. A. Lise (MEN

2063); Santa Cruz do Sul, &, 22.1V.1995, R. Ott (MCTP 6127); Montenegro, &, 07.VII.1977, E. H. Buckup

(MCN 6116); Porto Alegre, 26, 19.X.1962, C. A. Hartlieb (IBSP, MCN 1008);S, 13.11.1998, F. Iranço (MCTP

10087); São Jerônimo, 9, 03.V1. 1982, C. J. Becker (MCN 10449). ARGENTINA. Misiones: Santa Maria, 9,

X.1953, De Carlo et al. (MACN); Santa Fé: Sunchales,9, Lockerell (MCZ). URUGUAI. Soriano: Punta de La

Agraciada,9, 10.VIII.1976, J. Blengini (CAS).

Material examinado. BRASIL. Paraíba: Teixeira (Serra do Teixeira),?, 30.11.1978, P.F. L. Duarte (UFPB);

Minas Gerais: Poços de Caldas (Morro do Ferro), 9, j, 01.VII.1967, J. Becker et al. (MNRJ); São Paulo:

Franco da Rocha, &, TV.1952, M. Pena (MZSP 12527); Salesópolis (Estação Biológica da Boracéia), 2), 25-

29.V.1949, E. Rabello (MZSP 12589): São Paulo, 2, 08.XII.1969 (IBSP 10973); (Serra da Cantareira), O,

VIII. 1944, E. Dente (MZSP 12587); (Santo Amaro, Cocaia, Represa Nova), 29, 07.X1.1948, H. Urban (MZSP

12585); Guarulhos, S, 02.X.1942, P°F. S. Pereira (MZSP 10783); Paraná: Morretes (Marumbi), 2, 1.1947, O.

Curial (MNRJ 13512); Curitiba (Sítio dos Jakobi), &, 02.X1.1978, A. Yamamoto (MCN 9143);5, 31.11.1979,

A. Yamamoto (MCN 9451): Santa Catarina: Nova Teutônia, S, F. Plaumman (SMF); Concórdia,S, 12.V11.1988,

F L. Franco & E. Pagini (MCN 17787); (Volta Grande), &, 30.1X.1989, C. A. Martinazzo (MCN 19554); Rio

Grande do Sul: Tenente Portela (Parque Estadual do Turvo); 9, 04-06.11.1980, A. A. Lise (MEN 8950); Rio

Uruguai (BR 153),9, IX.1988, Projeto Itá- Machadinho (MCTP 778); Rio Apuaê (BR 127),5, IX.1988, Projeto

Itá-Machadinho (MCTP 777); Barracão,9, XII.1988, Projeto Itá-Machadinho (MCTP 773); Bom Jesus (Fazenda

Santa Cruz, Sítio dos Aver),, 43, 28-30.111.1998, A. B. Bonaldo (MCN 29260); Caxias do Sul (Fazenda Souza),

2, 11-12.X1.1995, Equipe Lab. Aracnol. (MCTP 7137); (Vila Oliva), 20), 2, 05.1V.1975, A. A. Lise (MEN 2557,

2681); Canela,9, 157, 15.X.1965 A. A. Lise (MCN 704);S, 5 3, 06.11.1966, A. A. Lise (MEN 101); Carazinho,

2, 10.X.1979, A. A. Lise (MCN 8683); Esmeralda, 9, 24.V.1975, A. A. Lise (MCN 2912); Triunfo, S, 19.V.1977,

E. H. Buckup (MCN 5423); Porto Alegre, GC‘, 10.1V.1955, T. de Lema (MCN 1733); &, 03.1V.1958, O. Oliveira

(MCTP 3897); 9, 04.V.1960, G. Hoffmann (MEN 1545); 2, 08.VII.1963, C. A. Hartlieb (MEN 1208); 2 9,

20.1.1991, L. A. Bastian (MCN 20500). ARGENTINA. Misiones: San Javier, 9, 22-30.X1.1988, Projeto Garabí

(MCTP 511); Buenos Aires: Punta Lara, O, 06.V.1948, A. Buchmann (MACN).

Tapixaua gen. nov.

Especie-tipo. Tapixaua callida sp. nov.

Etimologia. O nome genérico, feminino, significa vassoura na língua tupi e faz

referência aos pêlos modificados das pernas I, semelhantes a escópulas, palavra por sua

vez derivada do latim scopae, vassoura.

Diagnose. Clípeo alto (figs. 288, 289); perna I com pêlos modificados no ápice

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 109

| dos fêmures e nas patelas e tíbias (figs. 51-53, 288); metatarso I com 5 pares de espinhos

| ventrais. Palpo do macho com subtégulo dividido em duas peças independentes (figs.

| 102, 103), uma delas com um grande processo cônico curvo que acompanha a margem

| retrolateral do tégulo no bulbo não-expandido (figs. 284, 285, 290). Epígino com uma

| abertura de copulação e espermatecas primárias pouco diferenciadas, fusionadas às

| secundárias (figs. 292, 293).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 3,8-4,5. Carapaça ovalada,

| nitidamente mais longa que larga; hirsuta, densamente coberta por pêlos brancos curtos

e poucas cerdas longas eretas castanhas, mais abundantes na região cefálica; com

| granulações muito finas distribuídas regularmente; maior largura no nível das coxas II,

| maior altura no nível das coxas III. Região cefálica mais baixa que a torácica, pouco

| delimitada, estreitamento pouco acentuado, margem anterior truncada, sub-reta, tubérculo

| interocular ausente (fig. 289); região torácica abruptamente rebaixada posteriormente;

| sulco torácico profundo, de comprimento subigual ao do QOM; margem posterior reta,

| não-invaginada. Clípeo muito alto, com três vezes o diâmetro dos OMA (fig. 288).

Ambas as fila de olhos fortemente procurvas; QOM aproximadamente tão longo quanto

largo, largura anterior subigual à posterior; cômoro ocular lateral ausente. Olhos médios

circulares, laterais subcirculares; OMA maiores, restantes subiguais em tamanho.

| Interdistâncias: OMA-OMA separados por cerca da metade de um diâmetro; OMA-

| OLA por um terço do diâmetro dos OMA; OMP-OMP por cerca de um diâmetro e

meio; OMP-OLP por um diâmetro dos OLP; OLA-OLP por um diâmetro dos OLP.

Chilum inteiro, liso, glabro, pouco esclerotinizado. Quelíceras curtas, pouco geniculadas,

| com cerca de um terço do comprimento da carapaça; face frontal com granulações muito

finas; retrolateral com estrias pouco conspícuas; côndilo basal inconspícuo, triangular;

| retromargem do sulco subungueal com 4 dentes subiguais, subcontíguos; garra com

cerca de um terço do comprimento da quelícera. Enditos convergentes, promargem sub-

| reta, retromargem profundamente escavada. Lábio pouco mais longo que largo, menor

| que a metade do comprimento dos enditos. Esterno pouco mais longo que largo, liso,

| com poucas cerdas eretas e pêlos não-inseridos em tubérculos; rebordo pouco conspícuo;

laterais da margem anterior pouco projetadas; escavações esternais ausentes.

Pernas longas e delgadas, quase glabras, com poucos pêlos simples e plumosos;

| comprimento relativo 4123; perna I com longos pêlos pseudo-escopulares, espatulados,

| de superfícies papiladas, a partir da metade distal da face ventral dos fêmures, na face

ventral das patelas e nas faces ventral, dorsal, dorso-prolateral e dorso-retrolateral das

tíbias (figs. 51-53, 288); pêlos das coxas não-inseridos em tubérculos; espinhos ventrais

| das tíbias e metatarsos muito longos; tíbia I com 9 pares de espinhos ventrais; metatarso

I com 5 pares de espinhos ventrais; escópulas ausentes nos tarsos e metatarsos, tarsos

| com cerdas espiniformes ventrais; metatarsos III e IV com tufo de cerdas ventro-distais

pouco pronunciado; unhas tarsais com 4 a 6 dentes curtos; tufos de pêlos subungueais

ralos; tricobótrias tarsais distribuídas em duas filas dorsais; órgão tarsal subapical (fig.

72); unha do tarso do palpo da fêmea lisa; trocanteres não-recortados.

| Abdômen pouco piloso, dorso com pêlos brancos curtos e cerdas eretas mais

| abundantes na região anterior; scutum dorsal, nos machos, amplo, cobrindo dois terços

| do abdômen; nas fêmeas, restrito ao terço anterior; scutum ventral ausente em ambos os

| sexos; tubérculo traqueal ausente. Cólulo triangular, coberto por pêlos simples.

| Palpo do macho. Tíbia curta, com menos da metade do comprimento do címbio;

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

110 BONALDO

ATR bilobada, com PV deslocado ventralmente (figs. 286, 287). Cimbio sem PCr e

PCp; subtégulo dividido, composto por uma peça proximal em “T” (STp) e uma distal

(STd) provida de um grande processo cônico curvo (PST); fundus não-alargado, no

subtégulo. PTd de ápice não-dobrado em gancho (figs. 102, 103). Reservatório curto,

pouco espiralado, com apenas uma volta ventral em “S” ventral mediano. Condutor

hialino; êmbolo fusionado ao tégulo, de base engrossada, distalmente afilado (figs. 284,

285, 290, 291). Epígino com uma abertura de copulação mediana e um profundo sulco

procurvo posterior (fig. 292); vulva com PVP; ducto copulatörio longo, descrevendo |

uma alça anterior à abertura de copulação; espermatecas secundárias reniformes,

fusionadas às primárias subquadrangulares (fig. 293).

Elenco. Monotípico.

Tapixaua callida sp. nov.

(Figs. 51-53, 72, 102, 103, 284-293)

Holótipo 4, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas, Brasil,

17.11.1992, H. Höfer & T. Gasnier (INPA).

Etimologia. O nome específico, do latim callidus, esperto, arguto, faz alusão ao

provável papel dos pêlos modificados das pernas I na simulação do tagma cefálico de

formigas. |

Nota. A associação de macho e fêmea desta espécie necessita de confirmação,

uma vez que foram coletados em localidades distantes.

Diagnose. Com os caracteres do gênero.

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça castanho-escura; quelíceras, enditos, lábio

e esterno castanhos, ápice do lábio e promargem dos enditos amarelos; pernas castanho-

claras, coxas e trocanteres I, Ile IV amarelos, coxa e trocânter III amarelos com laterais

castanhas, dorso do fêmur I com mancha clara alongada mediana, terço apical dos

fêmures II, III e IV mais claros, ápice das tíbias I esbranquiçado; abdômen castanho-

escuro, dorso com um par de manchas claras anteriores e uma faixa clara transversal

mediana (fig. 289).

Comprimento total 3,97. Carapaça: comprimento 1,85, largura 1,4, altura 0,87; clípeo, altura 0,29. Olhos:

fila anterior 0,44, posterior 0,51; QOM: comprimento 0,25, largura anterior 0,27, largura posterior 0,31; diâmetros:

OMA 0,11, OLA 0,07, OMP 0,1, OLP 0,08; interdistâncias: OMA-OMA 0,07, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP

0,12, OMP-OLP 0,11, OLA-OLP 0,04. Quelíceras: comprimento 0,67; retromargem com 4 dentes subiguais,

separados; Promargem com 2, o primeiro maior. Esterno: comprimento 0,92, largura 0,87. Abdômen: comprimento |

1,95, largura 1,15. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 - fêmur 1,8/ patela 0,65/ tíbia 1,7/metatarso 1,72/tarso ||

0,97/total 6,84; II - 1,47/0,55/1,3/1,32/0,95/5,59; III - 1,5/0,52/1,22/1,32/0,97/5,53; IV - 2,12/0,57/1,78/1,82/ |

1,32/7,61. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2-2-2-2-2-0-0; metatarso v2-2-2-2-2-0. I - fêmur

d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2-2. II - fêmur d1-0-1; tíbia vO-2-0; metatarso v2-0-1. IV - fêmur dI-

0-1; tíbia rl-1; metatarso r1-1, v0-0-1. Palpo: figs. 284-287, 290, 291.

Fêmea (parátipo). Coloração como no macho, exceto abdômen cinza-violáceo

escuro sem manchas claras no dorso; ventre cinza-claro.

Comprimento total 4,45. Carapaça: comprimento 2,0, largura 1,45, altura 0,75; clipeo, altura 0,26. Olhos:

fila anterior 0,51, posterior 0,55; QOM: comprimento 0,26, largura anterior 0,3, largura posterior 0,28; diâmetros:

OMA 0,12, OLA 0,1, OMP 0,11, OLP 0,1; interdistâncias: OMA-OMA 0,09, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP

0,14, OMP-OLP 0,11, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 0,7; dentes como no macho. Esterno: comprimento

1,0, largura 0,9. Abdômen: comprimento 2,25, largura 1,3. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 - fêmur 1,95/

patela 0,75/ tíbia 1,8/ metatarso 1,77/tarso 0,85/ total 7,12; II - 1,62/0,6/1,32/1,35/0,92/5,81; HI - 1,57/0,55/

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 111

' 4

Figs. 284-287. Tapixaua callida sp. nov.: 284, palpo do macho, ventral; 285, ápice do bulbo, ventral; 286, processo

| ventral da apófise tibial retrolateral, ventral; 287, apófise tibial retrolateral, ventro-retrolateral. Abreviaturas: C,

condutor; E, êmbolo; LD, lobo dorsal da apófise tibial retrolateral; LV, lobo ventral da apófise tibial retrolateral;

PST, processo subtegular de Tapixaua; PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

112 BONALDO

291 sa À

/ ú y N

Figs. 288-293. Tapixaua callida sp. nov.: 288, macho, cefalotórax e perna I, frontal; 289, cefalotórax e abdômen,

dorsal; 290, palpo, ventral; 291, palpo, retrolateral; 292, epígino, ventral; 293, epígino, dorsal. Figs. 288, 289

(barra, 0,5 mm); 290, 293 (barra, 0,25 mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 113

| 1,25/1,37/1,05/5,79; IV - 2,25/0,62/1,85/1,87/1,35/7,94. Espinulação: I - fêmur dl-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-2-

2-2-2-1p-0; metatarso v2-2-2-2-2-0-0. II - fêmur dl-1; tíbia v2-2-2-2-2; metatarso v2-2-2. II - fêmur d1-0-1; tíbia

| v2-2-0; metatarso pl-1-0, r1-0-0, v2-2-1. IV - fêmur d1-0-1, r0-0-1; tíbia vlp-1p-2; metatarso p0-1-0,r1-1-0, vO-

0-1. Epígino: figs. 292, 293.

Variação. Comprimento: (8 S) total 3,8-4,5, carapaça 1,75-2,0, fêmur I 1,75-1,9. Alguns machos têm a

| mesma coloração abdominal, sem padrão definido, apresentada pela fêmea descrita; outros apresentam dorso do

abdômen com o par de manchas claras anteriores fusionadas, formando uma segunda faixa transversal procurva.

Distribuição geográfica. Norte e centro-oeste do Brasil e Huanuco, Peru.

| Material-tipo. Parátipos: BRASIL: Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke), S, 30.1X.1991

| (IBSP);O, 09.XII.1991 (MCN 28982);S, 30.X11.1991 (MNRJ);S, 20.1.1992 (IBSP);S, 08.VI.1992 (SMNK);

O, 25.1.1993 (MCN 28983);S, 01.VI.1996 (SMNK) (todos coletados por H. Höfer & T. Gasnier); Mato Grosso:

| Diamantino (Alto Rio Arinos), 2, X.1983, A. Cerrutti (MNRJ 13193); PERU: Huanuco: Estacion Biologica

| Panguana (Rio Yuyapichis, 09º 37º S, 74º 56° 09,9, 21.V1. 1984, M. Verhaagh (SMNK).

Methesis Simon

| Methesis Simon, 1896:411; 1897a:172 (descrição formal do gênero e designação subsegiiente da espécie-tipo,

Methesis semirufa Simon, 1896); PETRUNKEVITCH, 1911:492; ROoEWER, 1954:622: Bonner, 1957:2823;

REISKIND, 1969:166: BrIGNOLI, 1983:557: PLATNICK, 1989:446; 1993:617; 1997:724.

| Diagnose. Carapaça lisa, mais elevada no nível das coxas I; clípeo alto, maior que

| três vezes o diâmetro dos olhos médios anteriores (figs. 294-296); tarso I longo, com o

| comprimento aproximado do metatarso I (fig. 297). Palpo do macho com ATR bilobada,

| PV presente; êmbolo longo e arqueado; condutor membranáceo, curvo, de direcionamento

| proximal (fig. 298, 299). Epígino com uma abertura de copulação anterior; PVP e

espermatecas secundárias ausentes (figs. 300, 301).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 5,6-8,8. Carapaça suboval,

nitidamente mais longa que larga; quase glabra, com poucas cerdas longas eretas, mais

abundantes na região cefálica; lisa; maior largura entre as coxas II e III, maior altura

sobre as coxas I. Região cefälica levemete mais baixa que a torácica, pouco delimitada,

| estreitamento acentuado; margem anterior convexa, tuberculo interocular bem

desenvolvido (fig. 294): região torácica gradualmente rebaixada posteriormente (fig.

295); sulco torácico raso, menor que o comprimento do QOM; invaginação mediana da

margem posterior quase nula. Clípeo alto, com cerca de dois diâmetros e meio dos

OMA (fig. 296). Ambas as fila de olhos fortemente procurvas; QOM mais longo que

largo, largura anterior pouco maior que a posterior; cômoro ocular lateral quase nulo.

| Olhos circulares; OMA maiores, restantes subiguais em tamanho. Interdistâncias: OMA-

| OMA separados por cerca da metade de um diâmetro; OMA-OLA por menos da metade

do diâmetro dos OMA; OMP-OMP por pouco mais de um diâmetro; OMP-OLP por

cerca de um diâmetro e meio dos OMP; OLA-OLP subcontíguos. Chilum inteiro, liso,

glabro. Quelíceras não-geniculadas, menores que um terço do comprimento da carapaça;

| face frontal finamente granulada; retrolateral sem estrias; côndilo basal triangular;

| retromargem do sulco subungueal com 3 a 4 dentes; garra curta, com cerca de um terço

do comprimento das quelíceras. Enditos convergentes, promargem levemente côncava,

retromargem pouco escavada; lábio algo mais longo que largo, com cerca da metade do

comprimento dos enditos. Esterno mais longo que largo; com poucos pêlos inseridos

| em tubérculos; rebordo pouco nítido; laterais da margem anterior pouco projetadas;

escavações esternais ausentes.

| Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

114 BONALDO

Pernas longas e delgadas, com pêlos simples esparsos; pêlos plumosos

aparentemente ausentes; comprimento relativo 4123; pêlos das coxas inseridos em

tubérculos; tíbia I com 4 pares de espinhos ventrais; metatarso I com 2 pares de espinhos

ventrais; tarso I de comprimento subigual ao do metatarso I (fig. 297); escópulas ausentes

nos tarsos e metatarsos, nos tarsos substituídas por cerdas espiniformes; metatarsos III

e IV com tufo de cerdas ventro-distais inconspícuo; unhas tarsais com 3 a 5 a dentes

longos; pêlos subungueais ralos, curtos; tricobótrias tarsais distribuídas em duas filas

dorsais; unha do tarso do palpo da fêmea lisa; trocanteres não-recortados.

Abdômen piloso, com longas cerdas eretas e pêlos simples; pêlos plumosos

ausentes; scutum dorsal apenas nos machos, desenvolvido, quadrangular, ocupando a

metade anterior; scutum ventral ausente em ambos os sexos; tubérculo traqueal presente.

Cólulo triangular, com poucos pêlos simples.

Palpo do macho. Tíbia com cerca da metade do comprimento do címbio; ATR

bilobada, PV presente; címbio com PCr desenvolvido, quadrangular e sem PCp (figs.

298, 299); subtégulo inteiro; fundus não-alargado, no tégulo; PTd de ápice não-dobrado

em gancho; reservatório bem espiralado (fig. 114); condutor membranáceo, posicionado

sobre a margem retrolateral do tégulo, de ápice direcionado ventralmente; êmbolo longo,

arqueado, de base larga, amplamente fusionado ao tégulo (figs. 298, 299). Epígino com

uma abertura de copulação anterior ampla (fig. 300); vulva sem PVP; espermatecas

primárias grandes, alongadas; as secundárias ausentes.

Elenco. Monotípico.

Espécies excluídas. Methesis bimaculata Simon, de Queensland, Austrália, foi

relacionada por ReıskınD (1969:166) como Castianeirinae. M. brevitarsus Caporiacco,

da Guiana Francesa, possivelmente também pertence à Castianeirinae.

Methesis semirufa Simon

(Figs. 114, 294-301)

Methesis semirufa Simon, 1896:411 (síntipos 2 9, Chaco (2000 m), Bolívia, Garlepp, MNHN, examinados;

presente designação de lectótipo e paralectötipo); PETRUNKEVITCH, 1911:492; ROEwER, 1954:622: BoNNET,

1957:2823.

Diagnose. Com os caracteres do gênero.

Descrição. Macho (Estação Biológica Panguana, Huánuco). Carapaça e quelíceras

castanho-avermelhadas escuras; enditos, lábio e esterno amarelo-escuros, ápice dos

enditos esbranquiçado; pernas castanho-avermelhadas, fêmures castanho-avermelhados

escuros, dorso do abdômen cinza, ventre amarelo.

Comprimento total 6,1. Carapaça: comprimento 2,8, largura 2,0, altura 1,25; clípeo, altura 0,5. Olhos:

fila anterior 0,82, posterior 0,97; QOM: comprimento 0,5, largura anterior 0,57, largura posterior 0,5; diâmetros:

OMA 0,25, OLA 0,18, OMP 0,2, OLP 0,18; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,03, OMP-OMP

0,15, OMP-OLP 0,17, OLA-OLP 0,03. Quelíceras: comprimento 1,0; retromargem com 4 dentes subiguais,

separados. Estero: comprimento 1,25, largura 1,15. Abdômen: comprimento 3,2, largura 1,7. Pernas: comprimento

relativo 4123. I - fêmur 2,5/ patela 0,8/ tíbia 2,2/ metatarso 2,0/tarso 1,8/total 9,3; II - 2,1/0,8/1,85/1,85/1,6/8,2;

HI - 2,1/0,75/1,6/2,0/1,5/7,95; IV - 2,7/0,75/2,2/2,8/1,7/10,15. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-

2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-0; metatarso v2-2-0. II - fêmur dl-1-1; tíbia pl-1,

r1-1, v2-2-2; metatarso p1-0-1,r1-1-0, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1; tíbia pl-1,r1-1, v2-1p-2; metatarso p1-0-1, rl-

0-0, v2-2-1. Palpo: figs. 298, 299.

Fêmea (lectótipo). Coloração como no macho, exceto quelíceras castanho-

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Seo = pe

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 115

Figs. 294-301. Methesis semirufa Simon: 294, fêmea, cefalotórax, dorsal; 295, fêmea, cefalotórax, lateral; 296,

fêmea, cefalotórax, frontal; 297, macho, perna I, lateral; 298, palpo, ventral; 299, palpo, retrolateral; 300, epigino,

ventral; 301, epígino, dorsal. Figs. 294-297 (barra, 1 mm); 298-301 (barra, 0,25 mm), respectivamente na mesma

escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

116 BoNALDO

avermelhadas.

Comprimento total 9,4. Carapaça: comprimento 3,4, largura 2,6, altura 1,4; clípeo, altura 0,5. Olhos: fila

anterior 1,02, posterior 1,17; QOM: comprimento 0,5, largura anterior 0,6, largura posterior 0,55; diâmetros:

OMA 0,26, OLA 0,2, OMP 0,16, OLP 0,17; interdistâncias: OMA-OMA 0,17, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

0,22, OMP-OLP 0,29, OLA-OLP 0,05. Quelíceras: comprimento 1,2: retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 1,65, largura 1,5. Abdômen: comprimento 5,8, largura 3,6. Pernas: comprimento relativo 4123. I-

fêmur 3,0/ patela 1,0/ tíbia 2,7/ metatarso 2,5/ tarso 2,1/ total 11,3; II - 2,85/1,0/2,3/2,35/1,9/10,4; IM - 2,55/

0,95/1,95/2,3/1,5/9,25; IV - 3,3/1,0/2,8/3,45/1,9/12,45. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2-0;

metatarso v2-2-0. II -fêmur d1-1-0; tíbia v0-0-2-2-0; metatarso v2-2-0. II - fêmur dl-1-1; tíbia p1-0,r1-1, vlp-

1p-2; metatarso p1-0-1,r0-1-0, v2-0-0. IV - fêmur d1-1-1; tíbia pl-1,r1-1, vlp-1p-2; metatarso p1-0-0, r1-1-0,

v2-2-1. Epígino: figs. 300, 301.

Variação. Comprimento: (60) total 5,6-6,7, carapaça 2,5-4,8, fêmur 12,5-5,0; (59) total 5,9-8,8, carapaça

2,8-3,4, fêmur 12,4-3,0.

Distribuição geográfica. Norte da América do Sul.

Material examinado. COLÔMBIA. Cundinamarca: Sasaima (Finca Bella Vista),2,02.1.1965,P.R. Craig

(CAS). BRASIL. Amazonas: Manaus (Fazenda Esteio, 60 Km N Manaus), &, 09.1V.1985, B. C. Klein (MCN

19224); Ilha do Curarí, 2, 17.1X-04.X.1971, U. Irmler (INPA); S, 30.X1-23.x11.1971, Irmler (INPA); Mato

Grosso: Livramento, 9 subadulta, 28.VII.1992, A. A. Lise & A. Braul Jr. (MCTP 2593); Espírito Santo: Apiacá,

2,3, VII.1987,R.L.C. Baptista (CRB 1874). PERU. Huánuco: Estación Biologica Panguana (Río Yuyapichis,

09º 37° S, 74° 56º 0), 2 6,9, 24.X11.1983-18.11.1984; S, 20.V-03.V1.1984; 2 5, 30.VII-24.IX.1984 (todos

coletados por M. Verhaagh, SMNK).

Megalostrata Karsch

Megalostrata KarscH, 1880:377 (espécie-tipo por monotipia, M. venifica Karsch, 1880); Simon, 1898:200;

PETRUNKEVITCH, 1911:491: 1928:177,;, Roewer, 1954:604; Bonner, 1957:2749: BricnoLI, 1983:557;

PLATNIcK, 1989:446; 1993:620.

Delozeugma O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1893:105 (espécie-tipo por monotipia, D. mordicans O. Pickard-

Cambridge, 1893). Sinonimizado comMegalostrata porSımon, 1898:197.

Chemmis Simon, 1898:215 (especie-tipo por monotipia, C. frederici Simon, 1898); F. O. PICKARD-CAMBRIDGE,

1900:92:; PETRUNKEVITCH, 1911:457; ROEWER, 1954:618; Bonner, 1956:1040; BrıcnoLı, 1983:544;

PLATNIcK, 1989:433; 1993:600. Syn. nov.

Menalippe O. PickarD-CAMBRIDGE, 1898:284 (espécie-tipo por monotipia, M. punctigera O. Pickard-Cambridge,

1898). Simonimizado com Chemmis por F. O. PickarRD-CAMBRIDGE, 1900:92.

Melanippe; Simon, 1903:1037 (lapsus).

Diagnose. Chilum dividido; queliceras do macho muito alongadas, de comprimento

subigual ao da carapaca, com 2 grandes dentes retrolaterais (figs. 302, 303). Palpo do

macho com processo tegular (PTM) apical, romboidal; reservatório espiralado e &mbolo

subapical, espiniforme; condutor ausente (figs. 304-306, 310, 311). Epígino com duas

aberturas de copulação (fig. 308); vulva com PVP pouco esclerotinizada, espermatecas

secundárias presentes (fig. 309).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 7,6-15,6. Carapaça baixa,

suboval, pouco mais longa que larga, coberta por pêlos plumosos e poucas cerdas eretas

mais abundantes na região ocular, finamente granulada, mais larga entre as coxas II e

III; maior altura sobre a inserção palpal; região cefálica não-delimitada, estreitamento

pouco acentuado; margem anterior alargada e truncada; região torácica gradualmente

rebaixada; sulco torácico pouco profundo, longo, aproximadamente do mesmo

comprimento do QOM (figs. 302, 303, 307); altura do clipeo pouco menor do que o

diâmetro dos OMA. Olhos anteriores em fila levemente procurva; olhos posteriores em

fila procurva; QOM subquadrado, largura anterior pouco maior do que a posterior;

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 117

olhos circulares, OMA maiores, restantes subiguais em tamanho. Interdistâncias: OMA-

OMA separados por menos de um diâmetro; OMA-OLA por cerca de um terço do

diâmetro dos OMA; OMP-OMP por aproximadamente um diâmetro e meio; OMP-

OLP por até dois diâmetros dos OMP; OLA-OLP subcontíguos, separados por cerca de

um terço do diâmetro dos OLA. Chilum dividido, pouco hirsuto. Quelíceras dos machos

muito desenvolvidas e modificadas, estendidas horizontalmente, não-geniculadas, de

comprimento subigual ao da carapaça (figs. 302, 303); margem retrolateral do sulco

ungueal com 2 dentes grandes, separados, inseridos no terço mediano, o basal afilado, o

apical maior, de ápice geralmente laminar (fig. 303); margem prolateral com 3 dentes

pequenos, subiguais, inseridos no terço proximal; em M. raptrix, ápice da quelícera

com um tubérculo prolateral; côndilo basal subquadrangular; garra longa, de

comprimento pouco menor que o da quelícera, grossa, abruptamente afilada no terço

apical; em alguns espécimes de M. raptrix, garra com um dente ventral sub-basal (fig.

303); face frontal lisa; retrolateral com estrias transversais; quelíceras das fêmeas de

comprimento menor que a metade do comprimento da carapaça, levemente geniculadas,

verticais (fig. 307); 2 dentes separados, subiguais, na margem retrolateral do sulco

ungueal e 3 dentes subcontíguos, o basal menor, na prolateral; côndilo basal subtriangular.

Enditos levemente convergentes, promargem côncava, retromargem escavada; lábio tão

longo quanto largo, menor que a metade do comprimento dos enditos; esterno sem

escavações anteriores, quase tão largo quanto longo, margem anterior sinuosa, com as

laterais projetadas, rebordo conspícuo.

Pernas longas e algo afiladas, comprimento relativo 4123, cobertas de pêlos

plumosos e simples; coxas com pêlos näo-inseridos em tubérculos; tíbia I com 5 pares

de espinhos ventrais; metatarso I com 2 pares de espinhos ventrais; tarsos e metatarsos

I e Ile tarsos Ill e IV com escópulas ventrais ralas; metatarsos III e IV com denso tufo

de cerdas ventro-distais longas; tricobótrias tarsais em duas filas dorsais; unha do tarso

da fêmea pectinada; trocanteres I e II levemente recortados, III e IV recortados.

Abdômen coberto por pêlos simples e plumosos, estes mais abundantes na

superfície dorsal; scutum dorsal e ventral ausentes em ambos os sexos; tubérculo traqueal

presente, grande e esclerotinizado; cólulo representado por uma placa semicircular ampla,

coberta por poucos pêlos simples.

Palpo do macho. Tíbia com cerca da metade do comprimento do címbio; ATR

simples, laminar; PV ausente; címbio com PCr pouco pronunciado; PCp ausente (figs.

304, 310); subtégulo inteiro, com prolongamento mediano curto; fundus não-alargado,

no tégulo; PTd de ápice não-dobrado em gancho (figs. 110, 111); PTM romboidal,

apical, anterior à inserção embolar, mais desenvolvido em M. raptrix (fig. 304) do que

em M. depicta (fig. 310); condutor ausente; êmbolo espiniforme, fusionado ao tégulo

(figs. 304-306, 310, 311). Epígino com duas abertura de copulação medianas,

direcionadas para um átrio comum (fig. 308); vulva com PVP fracamente esclerotinizado;

ductos copulatórios curtos; espermatecas secundárias tubuliformes, posicionadas

obliquamente; espermatecas primárias globulares, menores que as secundárias (fig. 309).

Elenco. Duas espécies:

Megalostrata raptrix (L. Koch) comb. nov. (pág. 118).

Megalostrata depicta (O. Pickard-Cambridge). (pág. 119).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

118 BONALDO

Espécies excluídas. Chemmis steckleri Gertsch é aqui transferida para Septentrinna

gen. nov.; as espécies restantes descritas sob Chemmis, C. monisticus Chamberlin, C.

barroanus Chamberlin e C. bruneri Bryant, a julgar pelas descrições originais, não

pertencem a Megalostrata, ou mesmo a Corinninae.

Megalostrata raptrix (L. Koch) comb. nov.

(Figs. 110, 111, 302-309)

Hypsinotus raptor L.Kock, 1866:274, pr. 11, fig. 174 (holótipod, Mexico, BMNH 1916.6.1.801, examinado).

Megalostrata venifica KarscH, 1880:377, figs. 5, 5a,b (holótipo &, Costa Rica, Hoffmann, ZMB 2142,

examinado): F. ©.PICKARD-CAMBRIDGE, 1899:63; PETRUNKEVITCH, 191 1:492: RoEWER, 1954:604. Syn. nov.

Delozeugma formidabile O.PıcKARD-CAMBRIDGE, 1893:106, pr. 14, figs. 5a-h (holótipo &, Guanajuato, México,

A. Duges, BMNH 1091.3.3.156, examinado). Syn. nov.

Delozeugma mordicans O. PrekarD-CAMBRIDGE, 1897:225, pr. 28, figs. la-g (holötipo &, Tactic, Vera Paz,

Guatemala, Sarg, BMNH 1901.3.3.157, examinado). Syn. nov.

Megalostrata mordicans; Simon, 1898:197; F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899:63; PETRUNKEVITCH, 1911:492;

ROEWER, 1954:604: BonnET, 1957:2749.

Megalostrata venenifica; Simon, 1898:200 (lapsus).

Megalostrata formidabilis; Simon, 1898:200; F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1899:63; PETRUNKEVITCH, 1911:492;

ROEWER, 1954:604; Bonner, 1957:2749.

Chemmisfredericci Sımon, 1898:215 (holótipo 9, Costa Rica, MNHN, não-encontrado, provavelmente perdido);

1903:1037; F. O. PICKARD-CAMBRIDGE, 1900:92, pr. 7, fig. 2, pr. 8, figs. 1, la; PETRUNKEVITCH, 1911:457;

RogweR, 1954:618; Bonner, 1956:1040. Syn. nov.

Menalippe punctigera O.PICKARD-CAMBRIDGE, 1898:285, pr. 32, figs. 7a-e (holótipo 9, Teapa, Tabasco, México,

H. H. Smith, BMNH 1901.2.3.292, examinado). Sinonimizado com Chemmis fredericci Simon por F. O.

PICKARD-CAMBRIDGE, 1900:92.

Corinna raptor; PETRUNKEVITCH, 1911:469; RoEweER, 1954:599 (lapsus).

Megalostrata sperata Kraus, 1955:48, pr. 7, fig. 125 (holótipo 9, Finca El Carmen, Vulcão San Vicente, El

Salvador, 15.V1.1951, A. Zilch, SMF 8671/1, examinado): BricnoLI, 1983:557. Syn. nov.

Corinna raptrix; BONNET, 1956:1215.

Megalostrata venefica; BoNNET, 1957:2750 (lapsus).

Nota. A sinonimização de Chemmis frederici com Megalostrata raptrix foi baseada

no exame do holótipo de Menalippe punctigera, a qual foi smonimizada com Chemmis

frederici por F. O. PicKARD-CAMBRIDGE (1900).

Diagnose. Machos de Megalostrata raptrix diferem dos de M. depicta pelo palpo

com ATR de ápice inteiro e êmbolo de direcionamento retroventral (figs. 304-306); o

epígino da fêmea, com margem mediana delimitando um átrio posterior, é

presumivelmente diagnóstico (fig. 308).

Descrição. Macho (holótipo de M. venifica). Carapaça, quelíceras e enditos negros,

lábio negro, terço distal castanho; esterno e pernas castanho-escuros, abdômen castanho.

Comprimento total 8,3. Carapaça: comprimento 4,6, largura 3,8, altura 1,25; clípeo, altura 0,25. Olhos:

fila anterior 1,6, posterior, 1,8; QOM: comprimento 0,67, largura anterior 0,92, largura posterior 0,87; diâmetros:

OMA 0,37, OLA 0,25, OMP 0,27, OLP 0,27; interdistäncias: OMA-OMA 0,25, OMA-OLA 0,1, OMP-OMP

0,32, OMP-OLP 0,35, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 3,5; retromargem com 2 dentes; promargem

com 3 dentes; ápice com um tubérculo prolateral. Esterno: comprimento 2,45, largura 2,0. Abdômen: comprimento

3,6, largura 2,8. Pernas, comprimento relativo 4123. I- fêmur 5,0/ patela 2,0/ tíbia 4,6/ metatarso 4,2/ tarso 1,8/

total 17,6; II - 4,7/1,9/4,1/4,0/1,6/16,3; III - 4,1/1,7/3,5/3,8/1,5/14,6; IV - 5,0/1,9/4,2/5,6/1,7/18,4. Espinulação:

I- fêmur dl-1-1, p0-1-1; tíbia v1p-2-2-2-2: metatarso p0-1-0, v2-2-0. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1: tíbia v1p-2-2-2-

2; metatarso p0-1-0, v2-2-0. III - fêmur d1-1-1, pO-1-1-1,r0-1-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2: metatarso pl-1-1,

r1-1-1,v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-0-1-1, r0-0-0-1; tíbia pl-1,r1-1, v2-2-2: metatarso pl-1-1, rl-1-1, v2-2-

1. Palpo: figs. 304-306.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 119

| Fêmea (holótipo de M. sperata). Carapaça castanha, região cefálica e

| quelíceras castanho-escuras; enditos e lábio castanho-claros, com ápice amarelo;

| esterno amarelo; pernas amarelas, tíbias, metatarsos e tarsos castanho-claros; abdômen

| amarelo, com uma faixa longitudinal mediana amarelo-clara.

| Comprimento total 15,6. Carapaça: comprimento 5,9, largura 4,6, altura 2,15; clipeo, altura 0,3. Olhos:

| fila anterior 1,9, posterior 2,05; QOM: comprimento 0,8, largura anterior 1,05, largura posterior 0,95; diâmetros:

OMA 0,4, OLA 0,35, OMP 0,3, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,25, OMA-OLA 0,15, OMP-OMP 0,4,

OMP-OLP 0,4, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 2,95; retromargem com 2 dentes; promargem com 3

dentes. Esterno: comprimento 2,9, largura 2,7. Abdômen: comprimento 8,8, largura 5,6. Pernas, comprimento

| relativo 4123. 1 - fêmur 5,5/ patela 2,4/ tíbia 5,1/ metatarso 4,8/tarso 2,1/total 19,9; II - 5,3/2,4/4,7/4,5/1,9/18,8;

| 11-4,6/2,2/4,0/4,2/1,9/17,0; IV - 6,0/2,4/5,1/6,6/2,0/22,1. Espinulação: I- fêmur d1-1-1, pO-1-1-1; tíbia p0-1-

| 1,2-2-2-2-2; metatarso p1-1-0, v2-2-0. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1; tíbia p0-1-1, v1p-2-2-2-2; metatarso p1-1-0,

| v2-2-0. HI - fêmur dl-1-1, p0-1-1-1,r0-0-1: tíbia dO-1, pl-1,r1-1, v2-2-1r; metatarso p1-1-1,rl-1-1,v2-2-1. IV

- fêmur dl-1-1, p0-0-1-1, r0-0-1:; tíbia d0-1, pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1, rl-1-1, v2-2-1. Epígino: figs.

308, 309.

Variação. Comprimento: (10S) total 7,6-12,5, carapaça 3,5-5,7, fêmur I 4,0-6,6; (49) total 10,7-15,6,

carapaça 4,7-5,9, fêmur 1 4,8-5,6. A coloração da carapaça varia de negro a castanho; alguns exemplares apresentam

um par de faixas escuras longitudinais nas laterais da carapaça: em alguns espécimes, garra da quelícera com um

| dente ventral sub-basal; o padrão do dorso do abdômen, o comprimento da tíbia do palpo do macho e a forma do

ápice do PTM variam nos espécimes examinados. O aspecto geral do epígino varia de acordo com a quantidade de

tecido entre o tegumento e as espermatecas, impedindo a visão por transparência.

Distribuição geográfica. Sul do México e América Central.

Material examinado. MÉXICO. S (SMF 7618); Oaxaca: (fronteira com Chiapas, 21 Km O. Rizo de

Oro, 1615 m alt.)S, 06.1X.1972, C. Mullinex & K. Lucas (CAS); &, 08.IX.1972, C. Mullinex & K. Lucas

(CAS); Chiapas: San Cristobal de las Casas,S (BMNH 1901/3/3-160); (2164 m alt.),S, 02.1X.1972, C. Mullinex

(CAS). GUATEMALA. 29, Sarg (BMNH 1901/3/3-289, 290); 36, Sarg (BMNH 1901/3/3-159, 162, 163); C'

(MCZ). COSTA RICA. Santiago de Cartago (1180 m alt.), &, 12.VIII.1929 (MCZ); San José, 2 &, 9, Tristan

(MCZ); Puntarenas: Monteverde (Reserva Bosque Nuboso, 1700m), &, 17.VI1.1984, S. Mend (CPU). PAN AMÁ.

El Vale, S, VII.1936, A. M. Chickering (MCZ); Boquete, 5d, 39,5 j, VII.1939, A.M. Chickering (MCZ).

Megalostrata depicta (O. Pickard-Cambridge)

(Figs. 310,311)

* Delozeugma depictum O. PickarD-CAMBRIDGE, 1895:145, pr. 19, figs. la-d (holótipo &, Teapa, Tabasco,

México, H. H. Smith, BMNH 1901.3.3.164, examinado).

Megalostrata depicta; Simon, 1898:197; F. O. Prckarp-CAMBRIDGE, 1899:63; PETRUNKEVITCH, 1911:491;

Roewer, 1954:604: Bonner, 1957:2749.

Diagnose. Machos de Megalostrata depicta diferem dos de M. raptrix pelo

palpo com ATR de ápice bífido e êmbolo de direcionamento retroapical (figs. 310,

61):

Descrição. Macho (holötipo). Carapaga e queliceras castanho-avermelhadas,

enditos e läbio castanhos, esterno amarelo-escuro, pernas e abdömen amarelo-

claros.

Comprimento total 8,0. Carapaga: comprimento 3,5, largura 3,0, altura 1,25; clipeo, altura 0,27. Olhos:

fila anterior 1,37, posterior, 1,52; QOM: comprimento 0,67, largura anterior 0,77, largura posterior 0,72; diämetros:

OMA 0,35, OLA 0,27, OMP 0,25, OLP 0,27; interdistäncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,07, OMP-OMP

0,27, OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,1. Queliceras: comprimento 2,6; dentes como em M. raptrix. Esterno:

comprimento 1,95, largura 1,85. Abdömen: comprimento 4,4, largura 2,0. Pernas, comprimento relativo 4123. I

- fêmur 4,0/ patela 1,5/tíbia 3,75/ metatarso 3,7/tarso 1,6/ total 14,55; II - 3,9/1,4/3,45/3,5/1,5/13,75; II - 3,5/

1,3/3,0/3,4/1,5/12,7; TV - 4,05/1,3/3,5/4,55/1,7/5,1. Espinulagäo: I - fêmur dl-1-1, p0-1-1-1; tíbia v2-2-2-2-2;

metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1: tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2. HI - fêmur dl-1-1, p0-1-1-1, r0-1-

1-1; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,rl-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-0-1-1,10-0-0-1; tíbia pl-1,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

120 BoNALDO

Figs. 302-311. Megalostrata raptrix (L. Koch): 302, macho, cefalotórax e abdômen, dorsal; 303, macho, cefalotórax

e abdômen, lateral; 304, palpo, ventral (Oaxaca): 305, palpo, retrolateral; 306, palpo direito, ventral (holótipo de

M. venifica); 307, fêmea, cefalotörax, lateral; 308, epígino, ventral; 309, epígino, dorsal; M. depicta F. O. Pickard-

Cambridge: 310, palpo, ventral; 311, palpo, retrolateral. Abreviatura: PTM, processo tegular de Megalostrata e

Erendira. Figs. 302, 303, 307 (barra, 2 mm); 304-306, 308, 309 (barra, 0,5 mm); 310, 311 (barra, 0,25 mm),

respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 121

T1-1, v2-2-2: metatarso pl-1-1, r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 310,311.

Distribuição geográfica. Conhecida apenas da localidade tipo.

Material examinado. Somente o holótipo.

Erendira gen. nov.

Espécie tipo. Corinna pallidoguttata Simon.

Etimologia. O nome feminino é o de uma personagem do escritor colombiano

Gabriel Garcia Marques.

Diagnose. Chilum inteiro. Palpo do macho com condutor hialino; processo tegular

(PTM) prolátero-apical, acompanhando a curvatura retrolateral do êmbolo; reservatório

não-espiralado, cujo percurso ventral descreve um padrão em “S” transversal, com a

porção terminal do ducto passando adjacente à segunda dobra; êmbolo alongado, não-

espiniforme (figs. 314, 320). Epígino com duas aberturas de copulação anteriores, átrio

mediano amplo e vulva com um par de bolsas acessórias com aberturas laterais posteriores

(BVE) (figs. 316, 322).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 10,2-14,1. Carapaça suboval,

nitidamente mais longa que larga, pouco hirsuta, com pêlos simples esparsos, lisa;

maior largura no nível das coxas II, maior altura sobre a inserção palpal; região cefálica

pouco delimitada, estreitamento pouco acentuado; margem anterior sub-reta, tubérculo

interocular nulo; região torácica abruptamente rebaixada posteriormente em E.

pallidoguttata (fig. 312), gradualmente rebaixada em E. atrox (fig. 318); sulco torácico

profundo, curto, menor que o comprimento do QOM; invaginação mediana da margem

posterior conspícua; altura do clípeo pouco maior que um diâmetro dos OMA; ambas as

“filas oculares procurvas; QOM nitidamente mais longo que largo, largura anterior pouco

maior que a posterior; cômoro ocular lateral conspícuo; olhos médios circulares, laterais

“ovais; todos os olhos subiguais em tamanho. Interdistâncias: OMA-OMA por no máximo

“um diâmetro; OMA-OLA por cerca de um diâmetro dos OMA; OMP-OMP por um a

"dois diâmetros dos: OMP; OMP-OLP por até três diâmetros dos OMP; OLA-OLP

“subcontíguos. Chilum inteiro, glabro. Quelíceras relativamente longas, com cerca da

metade do comprimento da carapaça (figs. 312, 318), mais longas em machos do que

em fêmeas; face frontal lisa; retrolateral com estrias inconspícuas; côndilo basal

subtriangular; retromargem do sulco subungueal com 3 a 4 dentes; garra longa, com

cerca da metade do comprimento da quelícera. Enditos convergentes, promargem pouco

_ côncava, retromargem fortemente escavada; lábio pouco mais longo que largo, com

* cerca da metade do comprimento dos enditos. Esterno pouco mais longo que largo, liso,

com poucos pêlos inseridos em tubérculos e abundantes cerdas negras eretas; rebordo

“nítido, laterais da margem anterior pouco projetadas; escavações esternais ausentes.

Pernas longas e robustas, pilosas, cobertas por pêlos simples e plumosos;

_ comprimento relativo 4123; coxas com pêlos inseridos em tubérculos, mais conspicuos

“nas coxasTe II; tíbiaI com 3 a4 pares de espinhos ventrais; metatarso I com 2 pares de

“espinhos ventrais. Escópulas ralas nos metatarsos I e II, desde a inserção dos espinhos

| proximais, e em toda a extensão dos tarsos I e II; ausentes, substituídas por cerdas

_ espiniformes nos tarsos III e IV; metatarsos III e IV com tufo de cerdas ventro-distais

_ denso, mais desenvolvido em E. atrox do que em E. pallidoguttata; unhas tarsais com 6

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

122 BoNALDO

a 10 dentes curtos; pêlos subungueais densos; tricobótrias tarsais distribuídas em duas

filas dorsais; órgão tarsal subapical; unha do tarso do palpo da fêmea com poucos dentes,

curtos; trocanteres fortemente recortados.

Abdômen com abundantes pêlos plumosos e pêlos longos simples; scutum dorsal,

nos machos, mais desenvolvido em E. pallidoguttata (fig. 313) do que em E. atrox (fig.

319), ausente nas fêmeas de ambas as espécies; scutum ventral ausente em ambos os

sexos; tubérculo traqueal presente; cólulo representado por uma placa cônica, coberta

por pêlos simples.

Palpo do macho. Tíbia muito longa, maior que a metade do comprimento do

címbio; ATR simples em E. atrox (fig. 321), bilobada em E. pallidoguttata (fig. 315);

PV ausente; címbio sem PCr e PCp; subtégulo inteiro, com prolongamento mediano

curto; fundus alargado, no subtégulo; PTd ausente (figs. 112, 113); PTM de ápice agudo,

subapical, inserido no nível de inserção do êmbolo, afastado do êmbolo em E.

pallidoguttata (fig. 314), intimamente associado ao êmbolo em E. atrox (figs. 113,

320); reservatório de percurso não-helicoidal, descrevendo um padrão em “S” transversal,

com a porção terminal adjacente à segunda dobra; condutor hialino, não-modificado;

êmbolo filiforme, não-fusionado ao tégulo, com inserção mediana em E. pallidoguttata

e prolateral em E. atrox (figs. 314, 320). Epígino mais projetado sobre o sulco epigástrico

em E. pallidoguttata (fig. 316) do que em E. atrox (fig. 322), com duas aberturas de

copulação anteriores e um átrio posterior amplo, bem delimitado em E. atrox. Vulva

com PVP modificada em um par de bolsas acessórias (BVE) abertas na parede posterior;

ductos copulatórios amplos e conspícuos; espermatecas secundárias ausentes; as primárias

pouco diferenciadas, elipsóides (figs. 317, 323).

Elenco. Cinco espécies:

Erendira atrox (Caporiacco), comb. nov. (pág. 123).

Erendira luteomaculata (Petrunkevitch) comb. nov. - Panamá.

Corinna luteomaculata PETRUNKEVITCH, 1925 (holötipo Peabody Museum, New Haven, não-examinado).

Erendira pallidoguttata (Simon), comb. nov. (pág. 122).

Erendira pictitorax (Caporiacco), comb. nov. - Venezuela.

Megalostrata pictitorax Caporiacco, 1955 (holótipo MUCV, examinado).

Erendira subsignata (Simon), comb. nov. - Ilha de Saint Vincent.

Corinna subsignata Sımon, 1897b (holótipo BMNH, examinado).

Erendira pallidoguttata (Simon) comb. nov.

(Figs. 312-317)

Corinna pallidoguttata Simon, 1897b:885 (síntipos MNHN G, 9: BMNH 1894.9.18-112-122,3 0,89, 16),

Island of Saint Vincent, examinados; presente designação de lectótipo & e paralectótipo 2, MNHN: paralectótipos

25 e 89, 167, BMNH); PerrUNKEVITCH, 191 1:468: RoOEWER, 1954:598; Bonner, 1956:1214.

Nota. Um dos síntipos S depositado no BMNH, pertence a uma espécie do gênero

Abapeba.

Diagnose. Machos de E. pallidoguttata diferem dos de E. atrox pela ATR bilobada;

PTM afastado do êmbolo (figs. 314, 315); fêmeas diferem pelo epígino sem bordas

latero-anteriores e aberturas de copulação afastadas entre si (fig. 316).

Descrição. Macho (lectótipo). Carapaça, enditos, lábio e esterno castanho-

avermelhados claros, quelíceras castanho-avermelhadas, pernas amarelas; abdômen

cinza, dorso com uma grande faixa branca longitudinal anterior e cinco pares de manchas

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 123

brancas circulares laterais.

Comprimento total 10,2. Carapaça: comprimento 5,4, largura 4,3, altura 1,9: clípeo, altura 0,5. Olhos: fila

anterior 1,6, posterior 1,85; QOM: comprimento 0,8, largura anterior 0,9, largura posterior 0,8; diâmetros: OMA

0,35, OLA 0,3, OMP 0,2, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,2, OMA-OLA 0,15, OMP-OMP 0,3, OMP-

OLP 0,45, OLA-OLP 0,15. Quelíceras: comprimento 2,65; retromargem com 4 dentes iguais, separados. Esterno:

comprimento 2,6, largura 2,3. Abdômen: comprimento 4,8, largura 2,9. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 -

fêmur 5,2/ patela 2,3/ tíbia 5,0/ metatarso 4,9/ tarso 2,2/ total 19,6; II - 4,9/2,1/4,4/4,6/2,0/18,0; III - 4,4/1,9/3,5/

4,3/1,6/15,7; IV - 5,8/2,1/4,8/6,4/2,0/21,1. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2. II

- fêmur dl-1, p0-1-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-1-1; tíbia dO-1, pl-1,r1-1, v2-2-

2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-1-1; tíbia d0-1, pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso

pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 314, 315.

Fêmea (paralectótipo, MNHN). Coloração como no macho.

Comprimento total 8,1. Carapaça: comprimento 3,6, largura 2,8, altura 1,12; clípeo, altura 0,3. Olhos: fila

anterior 1,1, posterior 1,3; QOM: comprimento 0,58, largura anterior 0,58, largura posterior 0,58; diâmetros:

| OMA 0,3, OLA 0,25, OMP 0,18, OLP 0,2: interdistäncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,08, OMP-OMP 0,22,

OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,1. Quelíceras: comprimento 1,6; retromargem com 4 dentes iguais, subcontíguos.

Estero: comprimento 1,85, largura 1,7. Abdômen: comprimento 4,3, largura 2,5. Pernas: comprimento relativo

4123. 1- fêmur 3,4/ patela 1,5/ tíbia 3,25/ metatarso 2,95/ tarso 1,4/ total 12,5; II - 3,15/1,45/2,8/2,75/1,3/11,45;

HI - 2,95/1,35/2,35/2,75/1,1/10,5; IV - 4,1/1,45/3,5/4,25/1,35/14,65. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1:; tíbia

v2-2-2-2: metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, p0-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-0-1;

tíbia dO-1, pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-0-1; tíbia dO-1,

pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 316, 317.

Variação. Comprimento: (1 &) total 9,2, carapaça 4,7; fêmur 14,8: (5 9) total 7,2-11,1, carapaça 3,3-4,8,

fêmur I 3,1-3,7. Em machos e fêmeas, os pares de manchas abdominais dorsais variam de 5 a 6 e podem ser

alongados transversalmente (fig. 313).

Distribuição geográfica. Antilhas.

Material examinado. PUERTO RICO. Humacao: Rio Grande (El Verde Field Station), 2 09.V1.1982,D.

Townsend (MCZ); El Yunque (El Yunque Biological Station), 2 9, 4 j, 25.11.1969, A. Chickering (MCZ).

GUADALOUPE. 6, 29 (MNHN 1119).

Erendira atrox (Caporiacco) comb. nov.

(Figs. 112, 113, 318-323)

Megalostrata atrox Caporiacco, 1955:370, fig. 42 (holötipo? MUCV, XII-889, El Junquito, Distrito Federal,

- Venezuela, IV.1949, Marcuzzi, examinado): BrIGNOLI, 1983:557.

Megalostrata lohmanderi Caporiacco, 1955:372, figs. 43a-c (sintipos S e ? MUCV XII-803, El Junquito,

Distrito Federal, Venezuela, 16.X.1949, Roze; designado lectótipo S, examinado; síntipo 9, perdido, não

pertence a esta espécie, associação errônea); BRIGNOLI, 1983:557.Syn. nov.

Nota. No lote de Megalostrata lohmanderi nº XI1-803 do MUCV foi encontrado

apenas o síntipo macho de M. lohmanderi, aqui designado lectótipo. A identidade do

síntipo fêmea foi reconhecida através da ilustração do epígino na descrição original. No

material examinado, estas fêmeas foram encontradas associadas a machos de uma espécie

não descrita. Macho e fêmea de M. atrox foram coletados juntos em Colonia Tovar,

Ricaurte, fato que indicou a sinonímia de M. lohmanderi com esta espécie.

Diagnose. Machos de E. atrox diferem dos de E. pallidoguttata pela ATR única,

truncada e PTM intimamente associado ao êmbolo (figs. 320, 321); fêmeas diferem

pelo epígino com bordas latero-anteriores conspícuas e aberturas de copulação próximas

entre si (fig. 322).

Descrição. Macho (lectótipo de M. lohmanderi). Carapaça e quelíceras castanho-

avermelhadas escuras, enditos, lábio e esterno castanho-avermelhados, pernas amarelas;

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

124 BONALDO

Figs. 312-323. Erendira pallidoguttata (Simon): 312, fêmea, cefalotórax, lateral; 313, fêmea, abdômen, ventral;

314, palpo, ventral; 315, palpo, retrolateral; 316, epígino, ventral; 317, epígino, dorsal; E. atrox (Caporiacco):

318, fêmea, cefalotórax, lateral; 319, fêmea, abdômen, ventral; 320, palpo, ventral; 321, palpo, retrolateral; 322,

epígino, ventral; 323, epígino, dorsal. Abreviaturas: AC, abertura de copulação; BVE, bolsa vulvar de Erendira;

Abreviatura: PTM, processo tegular de Megalostrata e Erendira. Figs. 312, 313 (barra, 1 mm); 314, 315, 320,

321 (barra, 0,5 mm); 318, 319 (barra, 2 mm); 316, 317, 322, 323 (barra, 0,25 mm), respectivamente na mesma

escala.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 125

abdômen cinza, dorso escuro, com uma mancha branca longitudinal anterior, um par de

manchas brancas longitudinais medianas e um par de pequenas manchas brancas

subcirculares posteriores (fig. 319); ventre cinza-claro.

Comprimento total 10,5. Carapaça: comprimento 4,9, largura 4,5, altura 2,2: clípeo, altura 0,5. Olhos: fila

anterior 1,95, posterior 2,35; QOM: comprimento 0,8, largura anterior 0,85, largura posterior 0,9; diâmetros:

OMA 0,3, OLA 0,3, OMP 0,3, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,25, OMA-OLA 0,35, OMP-OMP 0,35,

OMP-OLP 0,65, OLA-OLP 0,2. Quelíceras: comprimento 3,4; retromargem com 3 dentes iguais, separados.

Esterno: comprimento 2,9, largura 2,7. Abdômen: comprimento 5,5, largura 3,2. Pernas: comprimento relativo

4123. 1- fêmur 5,1/ patela 2,3/ tíbia 4,9/ metatarso 5,0/tarso 1,9/ total 19,2; II - 4,9/2,3/4,4/4,6/1,8/18,0; HI - 4,1/

1,9/3,3/4,0/1,5/14,8; IV - 5,5/2,0/4,9/6,1/1,8/20,3. Espinulação: I - fêmur dl-1, p0-0-1:; tíbia v2-2-2; metatarso

v2-2. II - fêmur dl-1, p0-0-1: tíbia vlr-1r-0; metatarso v2-1p. II - fêmur d1-1, p0-1-1,r0-1-1: tíbia pl-1,rl-1, v2-

2-2: metatarso p0-1-1, r0-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1, p0-0-1,10-0-1; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2; metatarso p0-1-1,

r0-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 320, 321.

Fêmea (holótipo). Coloração como no macho.

| Comprimento total 15,3. Carapaça: comprimento 6,2, largura 5,2, altura 2,8; clípeo, altura 0,55. Olhos:

fila anterior 2,25, posterior 2,65; QOM: comprimento 0,9, largura anterior 1,0, largura posterior 0,95; diâmetros:

OMA 0,35, OLA 0,3, OMP 0,3, OLP 0,3; interdistâncias: OMA-OMA 0,3, OMA-OLA 0,4, OMP-OMP 0,4,

OMP-OLP 0,7, OLA-OLP 0,2. Quelíceras: comprimento 3,9: retromargem como no macho. Esterno: comprimento

3,3, largura 3,1. Abdômen: comprimento 8,5, largura 5,3. Pernas: comprimento relativo 4123. I - fêmur 5,5/

patela 2,5/ tíbia 4,8/ metatarso 1,8/ tarso 1,8/ total 19,3; II - 5,0/2,5/4,2/4,3/1,7/17,7; II - 4,2/2,1/3,4/4,1/1,5/

15,3; IV - 5,8/2,3/5,0/6,4/1,9/21,4. Espinulação: I - fêmur d1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur

d1-1, p0-0-1; tíbia vIr-1r-Ir; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1, pO-1-1-1, r0-1-1-1;tibiapl1-1, rl-1, v2-2-2; metatarso

pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur di-1, p0-0-1,r0-0-1; tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1.

Epigino: figs. 322, 323.

Variação. Comprimento: (25) total 10,5-11,9, carapaça 4,9-5,7, fêmur 15,1- 5,5; (59) total 10,5-14,1,

carapaça 4,8-6,3, fêmur I 4,0-5,4.

Distribuição geográfica. Noroeste da Venezuela.

Material examinado. VENEZUELA. Distrito Federal: El Junquito, 2, IV.1949, Marcuzzi (MUCV XTI-

| 888); Entre El Junquito e Carayaca,?, 02.V.1981, A. R. Delgado & M. A. Gonzales-Sponga (CPS 169); Aragua:

| Rancho Grande (próximo à Maracay),9, j, 1946, W. Beebee (AMNH); Ricaurte: Colonia Tovar, S, 9,2] (MNHN

| 11018); (Pico Codazzi),9, 16.1.1982, A. R. Delgado & M. A. Gonzales-Sponga (CPS 926).

Stethorrhagus Simon

Stethorrhagus Simon, 1896:421; 1898:200, figs. 198, 199, 202 (espécie-tipo por designação subsegüente, 5.

limbatus Simon): ROEwER, 1954:604: Bonner, 1958:4167; BricnoLI, 1983:557; PLATNICK, 1989:446;

1993:617;BONALDO & BrEscovir, 1994:34: PLATNICK, 1997:732.

Diagnose. Palpo do macho com ATR bilobada e ATV semi-articulada, com a face

retrolateral fusionada à tíbia; êmbolo de ápice bífido, com a abertura do ducto ejaculatório

sobre a bifurcação (BonALDO & BrEscoviT, 1994, figs. 1b, 5c, 9b, c, 10b). Epígino, em

| geral, com uma abertura de copulação; apenas em Stethorrhagus limbatus Simon, duas

| aberturas de copulação posicionadas em uma escavação mediana comum; PVP cobrindo,

| no máximo, a metade posterior da vulva (BonaLDo & BrEscovIT, 1994, figs. 9d, 10f, g,

Rd e).

Elenco. Quinze espécies. BONALDO & BRrESCOvIT (1994) revisaram o gênero, considerando Stethorrhagus

striatus Franganillo e S. mandibulatus Franganillo como species inquirendae; Stethorrhagus hassleri Gertsch

| foi transferida para Parachemmis Chickering e Stethorrhagus mastigostylus Mello-Leitão, considerado sinônimo

| Júnior de S. hassleri. Transfere-se aqui uma espécie para Stethorrhagus e apresenta-se a ilustração do palpo

| expandido de S. oxossi Bonaldo & Brescovit, 1994 (fig. 115).

Stethorrhagus maculatus (L. Koch) comb. nov. - Colômbia.

Hypsinotus maculatus L. KocH, 1866 (síntipos BMNH, examinados).

Corinna maculata; PETRUNKEVITCH, 1911.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

126 BONALDO

Parachemmis Chickering

Parachemmis CHIcKERING, 1937:38 (espécie-tipo por designação original, Parachemmis fuscus Chickering);

ROEWeER, 1954:635; BonnET, 1958:3328; REISKIND, 1969:166; BrIGNOLI, 1983:544; PLATNICK, 1989:433;

1993:600; 1997:732: BONALDO & BrESCOvIT, 1994:34.

Diagnose. Palpo do macho com ATR única e ATV articulada; tégulo reduzido,

com processo laminar (PLP) e reservatório descrevendo uma hélice restrita à região

proximal; subtégulo de posição oblígua em relação ao tégulo no bulbo não-expandido;

êmbolo muito longo, filiforme, de ápice inteiro (figs. 324-326, 331, 335). Epígino com |

duas aberturas de copulação e ductos copulatórios longos; espermatecas secundárias |

pouco desenvolvidas; PVP ausente (figs. 333, 334, 337, 338).

Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 4,6-9,9. Carapaça suboval, mais

longa que larga; coberta por pêlos negros curtos e cerdas eretas mais abundantes na

região ocular; com granulações finas, visíveis apenas ao microscópio eletrônico de

varredura (fig. 8); maior largura sobre a coxa Il em P fuscus, entre as coxas II e III em

P. manauara, maior altura sobre a inserção palpal. Região cefálica baixa, pouco

delimitada, estreitamento muito acentuado em P. manauara (fig. 8), menos acentuado

em P fuscus; margem anterior convexa, tubérculo interocular bem desenvolvido,

especialmente em P. manauara; região torácica abruptamente rebaixada; sulco torácico

curto e profundo, de comprimento menor que o do QOM; invaginação mediana da

margem posterior pouco acentuada. Clípeo baixo, menor que o diâmetro dos OMA;

sulco clipeal presente (fig. 330). Fila de olhos anteriores fortemente procurva; fila de

olhos posteriores fortemente procurva em P. manauara, procurva em P. fuscus; QOM

mais longo que largo, largura anterior pouco maior que a posterior; cômoro ocular

lateral quase nulo. Olhos médios circulares, laterais subovais; OMA nitidamente maiores,

restantes subiguais em tamanho. Interdistâncias: OMA-OMA separados por cerca da

metade de um diâmetro; OMA-OLA subcontíguos; OMP-OMP por cerca de um diâmetro;

OMP-OLP por pouco mais de um diâmetro dos OMP; OLA-OLP subcontíguos. Chilum

inteiro, liso, glabro. Quelíceras levemente geniculadas, pouco maiores que um terço do

comprimento da carapaça; face frontal lisa; retrolateral com estrias conspícuas em P.

fuscus (fig. 19), menos evidentes em. manauara; côndilo basal triangular; retromargem

do sulco subungueal com 4 a 5 dentes subiguais, separados; garra longa, de comprimento

maior que um terço do comprimento das quelíceras. Enditos convergentes, promargem

sub-reta, retromargem com escavações conspícuas; lábio tão longo quanto largo, com

cerca da metade do comprimento dos enditos. Esterno quase tão longo quanto largo,

hirsuto, com longos pêlos não-inseridos em tubérculos; rebordo nítido; laterais da

margem anterior pouco projetadas; escavações esternais presentes, pouco profundas

(figs. 25, 26).

Pernas longas e afiladas em P. manauara, mais robustas em P. fuscus; cobertas

por pêlos curtos simples e plumosos; em P manauara (figs. 55, 56) eP hassleri (BoNALDO |

& Brescovir, 1994, figs. 3b, c), geralmente, pêlos plumosos com haste achatada; em P

Juscus, haste dos pêlos plumosos não-modificada (fig. 54); comprimento relativo 4123;

coxas com pêlos não-inseridos em tubérculos; tíbia I com 4 pares de espinhos ventrais; |

metatarso I com 2 pares de espinhos ventrais. Escópulas dos tarsos I, Il e III, ralas; nos |

tarsos IV, substituídas por cerdas espiniformes (fig. 32); metatarsos Ie Il com escópulas |

muito ralas; metatarsos III e IV com tufo de cerdas ventro-distais inconspícuo; unhas |

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 127

| tarsais com 5 ou 6 dentes grandes; pêlos subungueais densos; tricobótrias tarsais

| distribuídas em duas filas dorsais; unha do tarso do palpo da fêmea lisa; trocanteres

| recortados.

| Abdömen piloso, com pêlos simples e plumosos e cerdas eretas esparsas; em P.

| | hassleri, pêlos plumosos com hastes não-achatadas (BonaLDo & BrEscovIT, 1994, fig.

| 3a); scutum dorsal presente apenas nos machos, pouco definido, restrito ao terço anterior;

| scutum ventral ausente em ambos os sexos; tubérculo traqueal presente (fig.75). Cölulo

| representado por uma placa triangular com poucos pêlos simples.

Palpo do macho. Tíbia longa, com mais da metade do comprimento do címbio em

'P fuscus; curta, com menos da metade do comprimento do cimbio em P manauara;

| ATR simples, PV ausente, ATV presente, articulada (fig. 324). Címbio sem PCr e PCp

| (figs. 331, 335). Subtégulo inteiro, de posição oblíqua em relação ao tégulo no bulbo

| não-expandido; fundus não-alargado, no tégulo; PTd pouco desenvolvida. Tégulo

| reduzido, com um processo laminar retrolateral (PLP), inserido próximo à base do

| êmbolo, muito desenvolvido em P. fuscus (fig. 325, 331) e pequeno em P. manauara

| (fig.335); reservatório pouco espiralado, hélice restrita à região proximal do tégulo.

| Condutor hialino, longo; êmbolo filiforme, muito longo e curvo (figs. 325, 326, 331,

| 336). Epígino com duas aberturas de copulação posteriores (figs. 333, 337); vulva sem

| PVP; ductos copulatórios longos; espermatecas secundárias tubulares, minúsculas, bem

| menores que as primárias, globulares (figs. 334, 338).

Elenco. Três espécies:

Parachemmis fuscus Chickering (pág. 127).

Parachemmis hassleri (Gertsch) - Guiana.

Stethorrhagus hassleri GERTSCH, 1942 (holótipo MCZ, examinado).

Parachemmis hassleri; BONALDO & BREScoVvIT, 1994.

Parachemmis manauara sp. nov. (pág. 128).

Espécie excluída. Parachemmis trilineatus Chickering é aqui transferida para

Tupirinna gen. nov.

Parachemmis fuscus Chickering

(Figs.19, 54, 116, 117, 324, 325, 330-334)

Parachemmis fuscus CHICKERING, 1937:39, figs. 22, 33, 41,45, 48,52 (holótipo de parátipos S, 29, Ilha de Barro

Colorado, Zona do Canal, Panamá, 16.VI-15.VII.1934, A. M. Chickering, MCZ, examinados); ROEWER,

1954:635; BonnET, 1958:3324.

| Corinna tenubra CHicKEring, 1972:373, figs. 18-22 (holótipo &, Ilha de Barro Colorado, Zona do Canal, Panamá,

| VI. 1950, A.M. Chickering, MCZ, examinado): BricnoLI, 1983:556. Syn. nov.

Diagnose. Machos de Parachemmis fuscus diferem dos de P. manauara pelo palpo

do macho com processo tegular laminar amplo, inserido medianamente, próximo à

inserção do êmbolo; porção média do êmbolo abrigada atrás do tégulo no palpo não-

expandido (figs. 325, 331, 332); fêmeas diferem pelas aberturas de copulação medianas,

próximas entre si e pelos ductos copulatórios não-espiralados (fig. 333).

Descrição. Macho (Ilha de Barro Colorado, Panamá). Carapaça castanho-clara,

quelíceras, enditos e lábio castanhos, esterno amarelo, de bordas castanhas, pernas

amarelas, abdômen amarelo, dorso com uma grande mancha violácea escura no terço

posterior.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

128 BONALDO

Comprimento total 7,6. Carapaça: comprimento 3,5, largura 2,9, altura 1,2; clípeo, altura 0,35. Olhos: fila

anterior 1,27, posterior 1,45; QOM: comprimento 0,7, largura anterior 0,8, largura posterior 0,72; diâmetros:

OMA 0,32, OLA 0,25, OMP 0,23, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,17, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP |

0,27, OMP-OLP 0,3, OLA-OLP 0,07. Quelíceras: comprimento 1,75; retromargem com 4 dentes iguais, separados.

Esterno: comprimento 1,8, largura 1,75. Abdômen: comprimento 3,9, largura 2,0. Pernas: comprimento relativo

4123. 1- fêmur 3,7/patela 1,4/ tíbia 3,3/ metatarso 3,3/tarso 1,6/ total 13,3; II - 3,6/1,4/3,2/3,3/1,5/13,0; HI -

3,4/1,2/2,8/3,2/1,45/12,05; IV - 4,2/1,3/3,5/4,7/1,7/15,4. Espinulação: I - fêmur d1-1-0, p0-1-1-0; tíbia v2-2-2-

2: metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-0, p0-1-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2-0. III - fêmur dI-1-1, p0-1-1, r0-1-

1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pO-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-0-1: tíbia, pl-1,r1-1,

v2-2-2: metatarso p1-1-1,rl-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 324, 325, 331, 332.

Fêmea (Ilha de Barro Colorado, Panamá). Coloração como no macho, exceto |

abdömen cinza, dorso com uma faixa branca transversal mediana.

Comprimento total 8,2. Carapaça: comprimento 3,5, largura 2,9, altura 1,4; clipeo, altura 0,3. Olhos: fila

anterior 1,25, posterior 1,4; QOM: comprimento 0,7, largura anterior 0,75, largura posterior 1,4; diâmetros: OMA

0,37, OLA 0,27, OMP 0,25, OLP 0,25; interdistâncias: OMA-OMA 0,12, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP 0,22,

OMP-OLP 0,27, OLA-OLP 0,05. Quelíceras: comprimento 1,65; retromargem como no macho. Esterno:

comprimento 1,8, largura 1,75. Abdômen: comprimento 4,5, largura 2,7. Pernas: comprimento relativo 4123. 1 -

fêmur 3,6/ patela 1,4/ tíbia 3,4/ metatarso 3,1/tarso 1,5/ total 13,0; II - 3,6/1,4/3,3/3,1/1,5/12,9; WI - 3,4/1,3/2,7/

3,1/1,4/11,9; IV - 4,2/1,4/3,7/4,8/1,6/15,7. Espinulação: I- fêmur d1-1-0, p0-1-1-0; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-

2-0. II - fêmur d1-1-0, pO-1-1; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-1, pO-1-1, r0-1-1; tíbia pl=1,rl-

1, v2-2-2; metatarso p0-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-0-1: tíbia pl-1, r1-1, v2-2-2; metatarso

p1-1-1,rl-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 333, 334.

Variação. Comprimento: (10 S) total 6,3-8,4, carapaça 3,1-3,7, fêmur I 2,9-3,8: (10 9) total 7,5-9,9,

carapaça 3,3-3,9, fêmur 1 3,3-4,4.

Distribuição geográfica. Sul da América Central.

Material examinado. PANAMÁ. Zona do Canal: 26,39, VIL1936( MCZ):S,º, 8-9.VII. 1936 (MCZ);

46,39, VII.1939 (MCZ, MCN 28452); 2, VII. 1939 (MCZ); 2 2, V.1950 (MCZ); 2, VI. 1950 (MCZ); 9, 9,

13.V11.1954 (MCZ); 25, 15.V.1964 (MCZ). Colón: Porto Belo, S, VII.1939 (MCZ) (todos coletados por A.

M. Chickering).

Parachemmis manauara sp. nov.

(Figs. 8, 24-26, 32, 55, 56, 75, 83-85, 326, 335-338)

Holótipo q, Fazenda Esteio (60 Km N Manaus), Manaus, Amazonas, Brasil,

23.X.1985, B. C. Klein (MCN 19299).

Etimologia. O substantivo específico designa os nativos de Manaus, Amazonas.

Diagnose. Machos de Parachemmis manauara diferem dos de P. fuscus pelo palpo

do macho com processo tegular laminar pequeno, inserido na margem retrolateral do

tégulo, afastado da inserção do êmbolo; porção média do êmbolo não-abrigada atrás do

tégulo no palpo não-expandido (figs. 326, 335, 336); fêmeas diferem pelas aberturas de

copulação laterais, afastadas entre si e pelos ductos copulatórios espiralados (figs. 337,

338),

Descrigäo. Macho (holötipo). Carapaca, queliceras, enditos e labio castanho-

claros, esterno amarelo de bordas castanho-claras, pernas amarelas, abdömen cinza

uniforme.

Comprimento total 5,3. Carapaga: comprimento 2,3, largura 1,9, altura 0,8; clipeo, altura 0,25. Olhos: fila

anterior 0,73, posterior 0,81; QOM: comprimento 0,5, largura anterior 0,52, largura posterior 0,5; diâmetros:

OMA 0,23, OLA 0,15, OMP 0,15, OLP 0,14; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP

0,16, OMP-OLP 0,12, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 1,05; retromargem com 6 dentes iguais, separados.

Esterno: comprimento 1,1, largura 1,57. Abdômen: comprimento 2,85, largura 1,6. Pernas: comprimento relativo |

4123. 1 - fêmur 2,75/ patela 0,9/ tíbia 2,75/ metatarso 2,7/ tarso 1,65/ total 10,75; II - 2,75/0,9/2,65/2,75/1,65/

10,7; HI - 2,6/0,8/2,25/2,7/1,45/9,8; IV - 3,5/0,9/3,0/4,2/1,75/13,35. Espinulação: I - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1, rO-

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 129

\Figs. 324-329. Parachemmis fuscus Chickering: 324, palpo do macho, tíbia, ventral; 325, ápice do bulbo, ventral;

|P manauara sp. nov.: 326, palpo do macho, ventral; Tupirinna rosae sp. nov.: 327, palpo do macho, tíbia,

ventral; 328, ápice do bulbo, ventro-retrolateral; 329, epígino, ventral. Abreviaturas: ATV, apófise tibial ventral;

| €, condutor, E, êmbolo; PET, processo embolar de Tupirinna; PLP, processo laminar retrolateral de Parachemmis;

PV, processo ventral da apófise tibial retrolateral.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

BONALDO

130

Figs. 330-338. Parachemmis fuscus Chickering: 330, macho, cefalotórax, frontal; 331, palpo, ventral; 332, palpo,

retrolateral; 333, epigino, ventral; 334, epigino, dorsal; P manauara sp. nov.: 335, palpo, ventral; 336, palpo,

retrolateral; 337, epigino, ventral; 338, epígino, dorsal. Abreviatura: ATV, apófise tibial ventral apical. Figs. 330

(barra, 1 mm); 331-338 (barra, 0,25 mm), respectivamente na mesma escala.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000 |

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 131

1-0; tíbia p0-0-1, v2-2-2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1-1, r0-1-0; tíbia p0-0-1, v2-2-2-2; metatarso

| v2-2-0. IN - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-1-1; tíbia d0-0-1, pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1.1V

|- fêmur dl-1-1, p0-1-1, r0-0-1; tíbia d1-0-1, pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1, rl-1-1, v2-2-1. Palpo: figs.

326, 335, 336.

Fêmea (parätipo, Fazenda Esteio, Manaus, Amazonas). Coloração como no macho.

Comprimento total 6,2. Carapaça: comprimento 2,5, largura 2,0, altura 0,9; clípeo, altura 0,27. Olhos: fila

| anterior 0,8, fila posterior 0,87; QOM: comprimento 0,48, largura anterior 0,55, largura posterior 0,46; diâmetros:

| OMA 0,23, OLA 0,15, OMP 0,15, OLP 0,13; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP

10,16, OMP-OLP 0,15, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 1,1; retromargem como no macho. Esterno:

| comprimento 1,2, largura 1,25. Abdômen: comprimento 3,75, largura 2,0. Pernas: comprimento relativo 4123.1

- fêmur 2,75/ patela 0,9/ tíbia 2,55/ metatarso 2,4/ tarso 1,45/ total 10,05; II - 2,7/0,85/2,45/2,4/1,45/9,85; I -

2,55/0,85/2,2/2,5/1,3/9,4: IV - 3,3/0,95/2,85/3,75/1,5/12,35. Espinulação: I - fêmur d1-1-1, p0-1-1-0; tíbia v2-

| 2-2-2; metatarso v2-2-0. II - fêmur dl-1-1, p0-1-1-0; tíbia v2-2-2-2; metatarso v2-2-1. II - fêmur dl-1-1, p0-1-1,

|r0-1-1; tíbia dO-1, p1-1,rl-1, v2-2-0; metatarso p1-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-0-1; tíbia

|dO-1, pl-1,r1-1, vlp-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 337, 338.

| Variação. Comprimento: (10 5) total 4,6-5,4, carapaça 2,1-2,4, fêmur I 2,5-2,8; (5 9) total 4,9-6,2,

[carapaça 2,2-2,5, fêmur 12,3-2,7.

Distribuição geográfica. Amazônia central.

| Material-tipo. Parátipos: BRASIL. Amazonas: Manaus (Fazenda Esteio, 60 Km N Manaus), 26, 29,

| 14,15,29.V.1985 (MCN 19300, 19837, 19885); &, 2, 01.X.1985 (MCN 19303); &, 13.X1.1985 (INPA); &,

| 19.x11.1985 (INPA); 3 O, 12,15,16.1. 1986 (INPA); &, 12.11.1986 (INPA); &, 26.11.1986 (MCN 19306); &,

| 15.V.1986 (INPA); 9, 25.11.1987 (MCN 19304) (todos coletado por B. C. Klein).

Material examinado. BRASIL. Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke), 2, 21.X.1991,

| H. Höfer & T. Gasnier (SMNK); ©, 18-25.11.1992, A. D. Brescovit (IBSP); (Fazenda Esteio, 60 Km N Manaus),

IS, 22.V.1985 (INPA); 4 &, 03,15,16.X.1985 (INPA); &, 28.X.1985 (MCN 19835); 2 &, 11.X11.1985 (MCN

19307); 26, 07.1.1986 (INPA); 36, 06,18.11.1986 (INPA); 26, 13,26.11.1986 (INPA): &, 08.11.1987 (INPA);

19, 08.1V.1987 (MCN 19305); <q), 26.X1.1987 (INPA) (todos coletados por B. C. Klein).

Tupirinna gen. nov.

Espécie-tipo. Tupirinna rosae sp. nov.

Etimologia. O nome genérico, feminino, vem da fusão das palavras tupí, grupo

lingiúístico autóctone da América do Sul, e Corinna.

| Diagnose. Carapaça com três faixas longitudinais de coloração contrastante, duas

laterais e uma mediana; quelíceras do macho longas, garras com cerca da metade do

| comprimento das quelíceras. Palpo do macho com ATV articulada; tégulo pouco

| esclerotinizado, reservatório pouco espiralado; êmbolo curto, de ápice simples, com um

processo basal alongado curvo (PET, figs. 328, 339, 344). Epígino com uma abertura de

| copulação; vulva com ducto copulatório alargado, formando uma bolsa copulatória (figs.

1341, 343, 346, 347).

| Descrição. Comprimento total (machos e fêmeas) 3,75-5,4. Carapaça com três

faixas longitudinais de coloração contrastante, duas laterais, uma mediana; suboval,

'mais longa que larga; coberta por pêlos negros curtos e poucas cerdas eretas, mais

abundantes na região ocular; com granulações finas, visíveis apenas ao microscópio

eletrônico de varredura (fig. 7); maior largura entre as coxas Il e III, maior altura sobre

'a inserção palpal. Região cefálica baixa, pouco delimitada, estreitamento pouco

acentuado; margem anterior sub-reta, tubérculo interocular pouco desenvolvido; região

torácica abruptamente rebaixada; sulco torácico curto e profundo, de comprimento menor

| do que o do QOM; margem posterior sub-reta. Clípeo alto, com cerca de dois diâmetros

| dos OMA; sulco clipeal presente. Ambas as filas de olhos fortemente procurvas; QOM

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

132 BONALDO

tão longo quanto largo, largura anterior aproximadamente igual à posterior; cômoro

ocular lateral quase nulo. Olhos médios circulares, laterais subovais; todos os olhos

subiguais em tamanho. Interdistâncias: OMA-OMA separados por pouco menos de um

diâmetro; OMA-OLA por cerca de um terço do diâmetro dos OMA; OMP-OMP por |

cerca de um diâmetro e meio; OMP-OLP por pouco mais de um diâmetro; OLA-OLP

subcontíguos. Chilum inteiro, liso, glabro. Quelíceras curtas, menores que um terço do

comprimento da carapaça nas fêmeas; mais alongadas, com cerca de um terço do

comprimento da carapaça nos machos; em T. trilineata, muito longas, maiores que a

metade do comprimento da carapaça, com dentes afastados da base da garra; levemente |

geniculadas nas fêmeas, fortemente geniculadas nos machos; face frontal lisa; retrolateral

com estrias pouco conspícuas (fig. 20); côndilo basal triangular; retromargem do sulco '

subungueal com 4 dentes separados; garra mais longa em machos do que em fêmeas;

em machos de T. trilineata, garra muito longa, maior do que a metade do comprimento

da quelícera. Enditos convergentes, promargem sub-reta, retromargem com escavações

profundas; lábio pouco mais largo que longo, menor que a metade do comprimento dos

enditos. Esterno aproximadamente tão longo quanto largo, com pêlos longos não-

inseridos em tubérculos; rebordo nítido; laterais da margem anterior projetadas;

escavações presentes, profundas.

Pernas longas e delgadas, pilosas, cobertas por pêlos simples e plumosos;

comprimento relativo variável, perna IV maior que as demais, pernas I, IH e III de

comprimento subigual; macho de T. rosae, 4132 e fêmea, 4312; macho de T. trilineata,

4231 e fêmea, 431=2. Coxas com pêlos não-inseridos em tubérculos; tíbia I com 3 a 4

pares de espinhos ventrais; metatarso I com 2 pares de espinhos ventrais. Escópulas dos

tarsos le IL ralas; III e IV substituídas por cerdas espiniformes; metatarsos sem escópulas,

II e IV com tufo de cerdas ventro-distais inconspícuo; unhas tarsais com 4 a 5 dentes

grandes; pêlos subungueais densos; tricobótrias tarsais distribuídas em duas filas dorsais;

unha do palpo da fêmea lisa; trocanteres I e II pouco recortados; III e IV recortados.

Abdômen com pêlos simples e plumosos abundantes, sem cerdas eretas; scutum

dorsal e ventral ausentes em ambos os sexos; tubérculo traqueal presente (fig. 76). Cólulo

representado por uma placa subtriangular com poucos pêlos simples.

Palpo do macho. Tíbia maior que a metade do comprimento do címbio; ATR

simples, PV presente em T. rosae, ausente em T. trilineata; ATV presente, articulada.

Címbio com PCr pouco desenvolvido, sem PCp (figs. 339, 345). Subtégulo inteiro;

fundus alargado, no subtégulo; PTd ausente (fig. 118); Tégulo amplo, reservatório pouco

espiralado, com uma volta ventral em “S”: condutor hialino; êmbolo fusionado ao tégulo,

espiniforme, curto, com um processo basal (PET) (figs. 328, 339, 344). Epígino com

uma abertura de copulação anterior (figs. 329, 341, 346); vulva com PVP muito

desenvolvida em T. rosae (fig. 342), pouco desenvolvida em T. trilineata (fig. 347); |

ducto copulatório amplo medianamente, formando uma bolsa copulatória não-

esclerotinizada, visível apenas com a remoção da PVP, em T. rosae (fig. 343),

esclerotinizada em T. trilineata (fig. 347); espermatecas secundárias ausentes; as

primárias globulares (figs. 343, 347). |

Elenco. Duas espécies: |

Tupirinna rosae Sp. nov. (päg. 133). |

Tupirinna trilineata (Chickering), comb. nov. (päg. 134).

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 133

Tupirinna rosae sp. nov.

(Figs. 7, 20, 76, 86-88, 118, 327-329, 339-343)

| Holótipo 9, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas, Brasil,

21.X11.1992, H. Höfer & T. Gasnier (INPA).

| Etimologia. O nome específico é uma homenagem a Rejane Rosa, desenhista do

|MCN.

Diagnose. Machos de Tupirinna rosae diferem dos de T. trilineata pela ATR grande

com PV bem desenvolvido; ATV escavada retrolateralmente; êmbolo relativamente curto,

| com processo basal inserido ventralmente (figs. 327, 328, 339, 340); epígino com a

borda anterior da abertura de copulação conspícua, em “V” invertido; internamente,

| ‚com PVP bem desenvolvida e bolsa copulatória não-esclerotinizada (figs. 341-343).

Descrição. Macho (holótipo). Carapaça amarela com laterais castanho-escuras e

| uma faixa mediana castanha, estendida sobre a área ocular; queliceras castanho-escuras,

\enditos e lábio castanhos, esterno amarelo, bordas e escavações laterais anteriores

| castanhas, pernas amarelas, face ventral das patelas manchadas de castanho, tíbias com

| manchas castanhas ventrais na base e no ápice; dorso do abdômen cinza-escuro, com

area cardíaca amarela, 4 pares de manchas amarelas laterais e uma mancha amarela

retangular transversal posterior; ventre amarelo.

Comprimento total 4,75. Carapaça: comprimento 2,0, largura 1,65, altura 0,75; clípeo, altura 0,21. Olhos:

| fila anterior 0,61, posterior 0,69; QOM: comprimento 0,31, largura anterior 0,33, largura posterior 0,36; diâmetros:

| OMA 0,14, OLA 0,11, OMP 0,12, OLP 0,1: interdistäncias: OMA-OMA 0,07, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP

| 0,14, OMP-OLP 0,11, OLA-OLP 0,02. Quelíceras: comprimento 1,2; retromargem com 3 dentes iguais, separados;

| promargem com 2 dentes, primeiro muito maior. Esterno: comprimento 1,1, largura 1,12. Abdômen: comprimento

| 2,35, largura 1,9. Pernas: comprimento relativo 4132. I- fêmur 1,85/ patela 0,75/ tíbia 1,65/ metatarso 1,65/tarso

| 0,95/ total 6,85; II - 1,8/0,75/1,55/1,6/0,8/6,5: HI - 1,8/0,7/1,45/1,85/0,95/6,75: IV - 2,1/0,75/1,85/2,5/1,05/

8,25. Espinulação: I - fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2;

| metatarso v2-2. III - fêmur dl-1-1, p0-1-1,r0-1-1: tíbia pl-1,rl-1, v2-2-2; metatarso p1-0-1,1]-1-1, v2-2-1. IV -

fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-0-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1, rl-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 327, 328,

339, 340.

Fêmea (parátipo, Reserva Florestal Adolpho Ducke, Manaus, Amazonas).

| Coloração como no macho.

Comprimento total 5,1. Carapaça: comprimento 2,0, largura 1,75, altura 0,75; clípeo, altura 0,21. Olhos:

fila anterior 0,6, posterior 0,7; QOM: comprimento 0,35, largura anterior 0,34, largura posterior 0,37; diâmetros:

| OMA 0,14, OLA 0,12, OMP 0,14, OLP 0,11; interdistäncias: OMA-OMA 0,08, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP

0,14, OMP-OLP 0,1, OLA-OLP 0,04. Queliceras: comprimento 0,95; retromargem com 4 dentes iguais, separados;

promargem como no macho. Esterno: comprimento 1,15, largura 1,2. Abdômen: comprimento 2,75, largura 1,9.

| Pernas: comprimento relativo 4312. I - fêmur 1,85/ patela 0,8/ tíbia 1,55/ metatarso 1,5/tarso 0,9/ total 6,6; II -

1,85/0,8/1,5/1,5/0,85/6,5; III - 1,85/0,75/1,45/1,75/0,9/6,7; TV - 2,25/0,85/1,9/2,5/1,05/8,55. Espinulagäo: I -

fêmur dl-1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. I - fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. III -

fêmur d1-1-1, p0-1-1,r0-1-1; tíbia pl-1, r1-1, v2-2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dl-1-1, p0-1-

1, r0-0-1; tíbia pl-1, r1-1, v2-2-2; metatarso p1-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 341-343.

Variação. Comprimento: (10 C)) total 4,1-5,15, carapaça 1,8-2,2, fêmur I 1,8-2,0; (10 9) total 4,3-5,4,

carapaça 1,8-2,05, fêmur 1 1,75-1,95. A faixa mediana na carapaça varia em largura; em alguns indivíduos, o

padrão de colorido do dorso do abdômen é inconspícuo.

Distribuição geográfica. Amazônia venezuelana e brasileira.

Material-tipo. Parátipos: VENEZUELA. Amazonas: Neblina (Rio Mawarinuma, 66º 10º 0,00º 50º N),

8, 25.XI-04.X11.1984, A. L. Weitzman (MCZ); BRASIL. Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke),

S, 06-26.VI.1971, Irmler (INPA);?, 14.1.1991 (SMNK):;9, 11.11.1991 (INPA): 6, 23.IX.1991 (INPA); 2, 21.X.1991

(INPA); 2, 04.X1.1991 (INPA); S, 02.X11.1991 (IBSP); 9, 23.XI1.1991 (INPA); 2, 16.11.1992 (SMNK); 9,

06.1V.1992 (SMNK); S, 22.V1.1992 (SMNK); 2, 27.VII.1992 (IBSP); <q‘, 26.X.1992 (SMNK); 3, 21.XII.1992

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 denovembro de 2000

134 BonaLDO

(MCN 28456) (todos coletados por H. Höfer & T. Gasnier); (Igapó Tarumã-Mirim), 2, 17.XI1.1981, J. Adis

(SMNK); (Fazenda Esteio, 60 Km N Manaus), &, 28.V.1985, B. C. Klein (INPA); &, 01.X.1985, B. C. Klein

(MEN 19836); 2, 04.11.1987, B. C. Klein (MCN 19310).

Material examinado. BRASIL. Amazonas: Manaus (Reserva Florestal Adolpho Ducke), &S, 09-31.1.1972,

Irmler (INPA):S,21.X-14.X1.1971, Irmler (INPA); 56, 52, 02,04,09,30.IX.1991 (INPA, SMNK); 28, 14.X.1991

(INPA):;S, 22, 02,11,18.X1.1991 (INPA); &, 13.1.1992 (INPA); 26,9, 03,10,24.11.1992 (INPA, SMNK); 26,

23,30.I1.1992 (SMNK); 3 &, 13,20,27.1V.1992 (INPA, SMNK); 2 S, 08,17.V.1992 (INPA, SMNK); 9, 9,

22,29.V1.1992 (SMNK);G, 2, 13,27.VIL.1992 (SMNK);cJ,, 07.IX.1992 (SMNK);?, 12.X.1992 (SMNK) (todos

coletados por H. Höfer & T. Gasnier); (Fazenda Esteio, 60 Km N Manaus), &, B. €. Klein (MCN 19314).

Tupirinna trilineata (Chickering), comb. nov.

(Figs. 344-347)

Parachemmis trilineatus CHICKERING, 1937:41, figs. 28, 31, 35, 38, 49, 51 (holótipo GS, alótipo ®, Ilha de Barro

Colorado, Zona do Canal, Panamá, 1934, A. M. Chickering, MCZ, não-examinados; parátipos 39, 16.VI-

15.VH1 1934, A. M. Chickering, MCZ, examinados). ROEWER, 1954:635: Bonner, 1958:3324.

Diagnose. Machos de Tupirinna trilineata diferem dos de T. rosae pela ATR

pequena, sem PV; ATV não-escavada retrolateralmente; êmbolo relativamente longo,

com processo basal inserido dorsalmente (figs. 344, 345); epígino com borda posterior

da abertura de copulação conspícua, levemente recurva; internamente, com PVP pouco

desenvolvida e bolsa copulatória esclerotinizada (figs. 346, 347).

Descrição. Macho (Ilha de Barro Colorado, Panamá). Carapaça amarela com

laterais castanho-escuras e uma faixa mediana castanha, estendida sobre a área ocular; |

quelíceras, enditos, lábio e esterno amarelos, pernas amarelas, com as laterais das |

patelas, tíbias e metatarsos I e II manchados de castanho; abdômen amarelo, dorso com |

um par de manchas longitudinais cinza-escuras nas laterais da área cardíaca; na região

média, dois pares de manchas cinza-escuras de cada lado e posteriormente uma mancha |

ímpar, transversal, cinza-escura; contorno anterior das fiandeiras cinza-escuro.

Comprimento total 4,65. Carapaça: comprimento 2,1, largura 1,85, altura 0,85; clípeo, altura 0,25. Olhos: |

fila anterior 0,69, posterior 0,77; QOM: comprimento 0,38, largura anterior 0,39, largura posterior 0,42; diâmetros: |

OMA 0,13, OLA 0,13, OMP 0,12, OLP 0,11; interdistâncias: OMA-OMA 0,11, OMA-OLA 0,05, OMP-OMP

0,16, OMP-OLP 0,12, OLA-OLP 0,03. Quelíceras: comprimento 1,3; retromargem com 3 dentes iguais, separados. |

Esterno: comprimento 1,15, largura 1,15. Abdômen: comprimento 2,45, largura 1,45. Pernas: comprimento relativo |

4231. I- fêmur 2,15/ patela 0,85/ tíbia 1,75/ metatarso 1,8/ tarso 0,9/ total 7,45; II - 2,1/0,8/1,65/1,8/0,9/7,25; II |

- 2,1/0,75/1,6/1,95/0,95/7,35; IV - 2,5/0,85/2,0/2,75/1,1/9,2. Espinulagäo: I- fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia v2- |

2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia v2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, pO-1-1, r0-1-1; |

tíbia pl-1,r1-1, v2-2-0; metatarso p1-0-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur dI-1-1, p0-0-1,r0-0-1: tíbia pl-1, rl-1, v2- |

2-2; metatarso pl-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Palpo: figs. 344, 345.

Fêmea (Ilha de Barro Colorado, Panamá). Coloração como no macho.

Comprimento total 4,7. Carapaça: comprimento 1,95, largura 1,6, altura 0,75: clípeo, altura 0,16. Olhos: |

fila anterior 0,62, posterior 0,65; QOM: comprimento 0,36, largura anterior 0,35, largura posterior 0,38; diâmetros: |

OMA 0,13, OLA 0,13, OMP 0,13, OLP 0,11; interdistâncias: OMA-OMA 0,1, OMA-OLA 0,02, OMP-OMP |

0,14, OMP-OLP 0,08, OLA-OLP 0,05. Quelíceras: comprimento 0,82; retromargem com 4 dentes iguais, separados. |

Esterno: comprimento 1,0, largura 1,05. Abdômen: comprimento 2,75, largura 1,95. Pernas: comprimento relativo |

431=2. I- fêmur 1,8/ patela 0,75/ tíbia 1,45/ metatarso 1,4/ tarso 0,75/ total 6,15; II- 1,8/0,75/1,4/1,45/0,75/6,15:

HI - 1,75/0,7/1,3/1,65/0,8/6,2; IV - 2,15/0,75/1,75/2,35/0,95/7,95. Espinulação: I - fêmur d1-1-1, p0-0-1; tíbia

v2-2-2-2; metatarso v2-2. II - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-1-0; tíbia vlp-2-2-2: metatarso v2-2. III - fêmur d1-1-1,

p0-1-1,r0-1-1; tíbia pl-1, rl-1, v2-2-2; metatarso p1-O-1,r1-1-1, v2-2-1. IV - fêmur d1-1-1, p0-1-1, r0-0-1; tíbia

pl-1,r1-1, v2-2-2; metatarso p2-1-1,r1-1-1, v2-2-1. Epígino: figs. 346, 347.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)...

185

Figs. 339-347. Tupirinna rosae sp. nov.: 339, palpo, ventral; 340, palpo, retrolateral; 341, epigino, ventral; 342,

epígino, dorsal; 343, epigino, dorsal (placa dorsal removida); T. trilineata (Chickering): 344, palpo, ventral; 345,

palpo, retrolateral; 346, epígino, ventral; 347, epígino, dorsal. Abreviaturas: ATV, apófise tibial ventral apical; PV,

processo ventral da apófise tibial retrolateral. Todas as figuras na mesma escala (barra, 0,25 mm).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

136 BonaLDO

carapaça 2,15-1,75, fêmur I 1,7-1,95. Em alguns espécimes as manchas medianas do dorso do abdômen estão

fusionadas.

Distribuição geográfica. Sul da América Central.

Material examinado. PANAMÁ. Zona do Canal: Ilha de Barro Colorado, ?, VIL.1934;2, VIL.1936;6,9,

VII 1937:92, VII.1939; 2, 1939; 6, 08.1.1964; 2, 15.V.1964 (todos coletados por A. M. Chickering, MCZ); O,

12.V1.1972, Y. Lubin (MCZ); Colon: Fort Gulick, 6, II.1980, H. J. Harlan (AMNH).

Attacobius Mello-Leitão

Myrmecobius MeLLO-LerTÃO, 1923b:524 (espécie-tipo por designação original, Myrmecobius luederwaldti ||

Mello-Leitão).

Attacobius MELLO-LEITÃO, 1925:455 (nomem novum paraMyrmecobius Mello-Leitão).

Myrmeques RoEweR, 1935:193 (espécie-tipo por monotipia, Myrmeques attarum Roewer). Sinonimizado com |

Attacobius por MELLO-LEITÃO, 1947:285.

Morenilia MeLLo-LerrÃo, 1942:412 (espécie-tipo por designação original, Morenilia nigripes Mello-Leitão).

Sinonimizado comAttacobius por PLATNICK & BAPTISTA, 1995:6.

Achalaicola MeLLo-LerrÃo, 1943:113 (espécie-tipo por designação original, Achalaicola vestita Mello-Leitão).

Sinonimizado comAttacobius porPLATNICK & BAPTISTA, 1995:6.

Diagnose. Carapaça baixa; oito olhos, OMA com demarcação interna nítida

(BonALDo & BrEescoviT, 1997, fig. 14); metatarso das pernas sem espinho ventral apical

mediano, curvo; ápice dos tarsos das pernas comprimido lateralmente.

Elenco. Quatro espécies. PLATNICK & BAPTISTA (1995) reconheceram Attacobius luederwaldti (Mello-

Leitão, 1923) de São Paulo, A. attarum (Roewer, 1935), do Rio de Janeiro e A. nigripes (Mello-Leitäo, 1942),

do Chaco argentino. BonaLDO & Brescovir (1997) reinterpretaram os escleritos do palpo do macho de A. attarum

e descreveram 4. verhaagui, do Ceará, estendendo a distribuição do gênero ao nordeste brasileiro.

Ecitocobius Bonaldo & Brescovit

Ecitocobius BONALDO & BrEescovir, 1997:166 (espécie-tipo por designação original e monotipia, Ecitocobius

comissator Bonaldo & Brescovit).

Diagnose. Carapaça alta; dois olhos, os posteriores e laterais anteriores ausentes;

OMA sem demarcação interna nítida; metatarso das pernas com um espinho ventral

apical mediano, curvo (BonaLDO & Brescovir, 1997, figs. 1, 7, 8); ápice dos tarsos das

pernas não-comprimidos lateralmente.

Elenco. Monotípico.

DISCUSSÃO

A hipótese de monofiletismo de Corinnidae, proposta por BonaLDo (1997), permite

testar a inclusão de alguns gêneros na família com base em, pelo menos, um caráter

informativo, a modificação da base das tricobótrias. Naquela ocasião, foram listados

quatro gêneros em Corinnidae incertae sedis (Janduba, Mandaneta, Procopius e

Pseudocorinna), e documentadas tricobótrias de representantes dos três primeiros.

Espécies de Pseudocorinna também apresentam bótriuns modificados. Outros dois

gêneros, o Afro-oriental Oedignatha Thorell (atualmente em Corinninae) e o Oriental

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 137

Sesieutes Simon (listado em Liocranidae), apresentam o estado plesiomörfico da base

da tricobótria. Oedignatha e Sesieutes parecem estar relacionados a Teutamus Simon

(atualmente em Liocranidae), com o qual compartilham bulbo do palpo do macho pouco

esclerotinizado e êmbolo apical achatado, curvo, acompanhando a declividade do tégulo.

É possível que estes gêneros pertençam a um grupo relacionado à Trachelinae pelo

bulbo do palpo do macho de paredes pouco esclerotinizadas, inflado e preenchido por

tecidos organizados em folículos (M. Ramírez, com. pessoal) e pelas pontes inter-coxais

conectando o esterno à carapaça. Esta hipótese implicaria na origem homoplásica da

modificação da base da tricobótria em Trachelinae ou na reversão do caráter naqueles

três gêneros.

Outro caráter que poderia corroborar o monofiletismo de Corinnidae é o padrão

de distribuição das fúsulas das glândulas cilíndricas, as quais estão envolvidas na

produção das ootecas e ocorrem apenas em fêmeas. PLATNICK et al. (1991) sugeriram

que a presença destas fúsulas corrobora o grupo Entelegynae, assumindo perda(s)

secundária(s) em Anyphaenidae, Miturgidae, Clubionidae e Salticidae. Nas fiandeiras

médias de fêmeas de Liocranidae ocorrem várias destas fúsulas, dispostas em fila dupla.

Em Janduba, Mandaneta, Procopius, Corinninae e Castianeirinae ocorrem três fúsulas

nas fiandeiras médias posteriores e duas nas laterais posteriores.

Todos os Corinninae apresentam o subtégulo semicircular, em “T”, sem traços de

anelli. Subtégulos semicirculares são comuns em Dionycha, ocorrendo em Miturgidae

(BonALDo, 1994) e em representantes de Trachelinae e Castianeirinae. Entretanto, pelo

menos três gêneros de Corinnidae incertae sedis, os africanos Mandaneta, Procopius e

Pseudocorinna apresentam o subtégulo completo, em forma de taça, com diversos anelli

conspícuos, uma possível simplesiomorfia. Entre aqueles grupos que compartilham

subtégulo semicircular, apenas Janduba e Corinninae compartilham subtégulo em “T”,

| sem anelli, o que faz de /anduba um possível grupo irmão de Corinninae. Em /anduba

e na maioria dos coriníneos, o fundus do reservatório não se estende ao subtégulo,

estando localizado em uma projeção tegular dorso-retrolateral (PTd). Esta é uma condição

rara em Dionycha, onde o fundus é, em geral, abrigado pelo subtégulo. Entretanto, em

alguns gêneros de Corinninae, nos quais o reservatório sofreu desenrolamento (Creugas,

Erendira e em algumas espécies de Stethorrhagus e Tupirinna), o fundus é amplo e está

inserido no subtégulo, sendo estes eventos passíveis de serem considerados como

reversões. Com efeito, a aquisição do fundus amplo, incluído no subtégulo, pode

representar uma adaptação para a manutenção da capacidade de armazenamento do

esperma, frente ao desenrolamento e consegiiente encurtamento do reservatório. Em

todas as espécies com reservatório fortemente espiralado, o fundus é pequeno e está

incluído no tégulo. Outra evidência em favor da hipótese de Janduba como grupo irmão

de Corinninae é a presença de um processo, filiforme ou em forma de gancho, no lobo

ventral da apófise tibial retrolateral (PV) (=AS, BonatDo, 1997). Em /anduba este

processo é cercado por um prolongamento apical e um basal, o que constitui uma

sinapomorfia do gênero. O PV é reconhecível em diversos coriníneos, sendo uma possível

simplesiomorfia para a subfamília. A presença de ATR bilobada em Janduba pode indicar

que este estado seja uma simplesiomorfia em Corinninae, sendo a ATR única, um estado

derivado pela redução de um dos lobos ou pela fusão destes. A hipótese de redução do

lobo dorsal é reforçada pela ocorrência de PV em várias espécies com ATR única.

Entretanto, a condição ATR única provavelmente não é resultado de um só evento, uma

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

138 BoNALDO

vez que ao menos em Paradiestus giganteus, este estado parece ter sido alcançado por

fusão dos lobos ventral e dorsal.

O monofiletismo de Corinninae é sustentado por, pelo menos, duas sinapomorfias

putativas, o reservatório de percurso helicoidal e a presença de uma área esclerotinizada

distal no reservatório (AER), caracteres que estão ausentes em Janduba. Entretanto,

nódulos esclerotinizados, similares à AER, ocorrem esporadicamente em Castianeirinae,

o que poderia indicar que Corinninae e Castianeirinae formam um grupo monofilético.

Por outro lado, a interpretação do reservatório de percurso helicoidal como uma

sinapomorfia de Corinninae implica em alguns eventos independentes de desenrolamento,

como nos gêneros Creugas, Tapixaua e Erendira. Mesmo em níveis de generalidade |

menor, como no grupo bicalcarata de Septentrinna e em espécies de Falconina, Xeropigo, |

Parachemmis, Tupirinna e Stethorrhagus, ocorrem independentemente diferentes graus

e formas de desenrolamento do reservatório, caracteres potencialmente utilizáveis na

reconstrução da história evolutiva das espécies de cada um destes gêneros. Hipóteses

alternativas considerariam um padrão de percurso simples, presente, por exemplo, em

Creugas ou Tapixaua, como condição plesiomórfica em Corinninae, o que implicaria

em diversas instâncias de aquisição do reservatório helicoidal. A perda da apófise média,

presente em gêneros de Corinnidae insertae sedis e em diversas famílias de

Araneomorphae, é um caráter de difícil interpretação fora do contexto de uma análise

da família Corinnidae como um todo. Os integrantes de Castianeirinae e Trachelinae

não apresentam esta estrutura, o que poderia indicar que estes formam um grupo

monofilético com Corinninae. Neste caso, os gêneros considerados como Corinnidae

incertae sedis poderiam constituir grupos basais de Corinnidae. Entretanto, a hipótese

de que /anduba forma um grupo monofilético com Corinninae implica que a perda da

apófise média tenha ocorrido ao menos duas vezes na história evolutiva da família e que

um destes eventos independentes é uma sinapomorfia adicional para Corinninae.

A hipótese de monofiletismo de Corinna, proposta por BonaLDO (1996), com

base na presença de condutor esclerotinizado, implica na exclusão daquelas espécies

com condutor hialino, um estado plesiomórfico em Corinninae. Entretanto, ao menos

uma instância de homoplasia é necessária para a manutenção desta hipótese. Em

Xeropigo, o condutor apresenta-se esclerotinizado, com uma calha que aloja o êmbolo.

Na hipótese de homologia deste evento de esclerotinização, Corinna deveria ser redefinido

de forma a abrigar as espécies de Xeropigo. Contudo, em Corinna a calha é formada por

uma dobra da margem prolateral, enquanto que em Xeropigo, ambas as margens são

projetadas formando uma calha mediana. Assim, a validade de Xeropigo é aqui mantida,

pois o critério de similaridade morfológica sugere não-homologia do condutor

esclerotinizado de Xeropigo e Corinna. Nas espécies de Xeropigo, o palpo do macho

apresenta um processo tegular que poderia ser interpretado como homólogo à apófise

media. Entretanto, a base membranosa deste esclerito é contínua com a parede do tégulo,

o que sugere que esta seja uma modificação tegular recente. O monofiletismo de Xeropigo

é portanto sustentado pela presença, no palpo do macho, de um processo tegular exclusivo

(PTX), de base pouco esclerotinizada, sobreposto ao êmbolo e ao condutor.

Dos quatro grupos de espécies aqui reconhecidos em Corinna, apenas o grupo

capito é claramente monofilético. Este grupo é caracterizado pelo palpo do macho com

êmbolo filiforme, articulado ao tégulo por uma membrana, e pelo processo tegular de

Corinna (PTC) digitiforme. Em todos os outros grupos de Corinninae o êmbolo é contínuo

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 139

ao tégulo. Os representantes do grupo rubripes compartilham o PTC pouco desenvolvido,

triangular e, no epígino, espermatecas primárias parcialmente encobertas por dobras

laterais da placa vulvar posterior (PVP). Os grupo kochi e aenea compartilham o PTC

virguliforme. Para o grupo kochi não foi possível propor hipóteses de monofiletismo. O

grupo aenea é caracterizado pela fila de olhos posteriores recurva, condição única em

Corinninae. Entretanto, neste grupo observa-se diversos graus de afastamento dos olhos

laterais posteriores em relação aos laterais anteriores, o que pode constituir uma série

de transformação ou, alternativamente, indicar homoplasia.

Os integrantes do gênero Paradiestus apresentam um sulco longitudinal conspícuo

na face retrolateral das quelíceras, fila dos olhos anteriores reta, com os olhos laterais

de direcionamento ventral oblíquo. Na grande maioria dos gêneros de Corinninae, a

fila dos olhos anteriores é procurva, sendo recurva apenas no gênero Attacobius. Outras

possíveis sinapomorfias de Paradiestus são a coxa I nitidamente mais robusta que as

demais, com a face ventral coberta por pêlos com inserções tuberculadas e a presença de

um processo tegular associado à base do êmbolo (PTP).

O monofiletismo de Abapeba baseia-se na presença de pêlos modificados em forma

de clava no cefalotórax, pernas e abdômen. Neste gênero, são definidos três grupos de

espécies putativamente monofiléticos. Dois destes grupos, abalosi e grassima,

compartilham uma área tegular esclerotinizada, subdistal, mediana, próxima da base

do êmbolo. No grupo abalosi esta área é representada por uma escavação e o ápice do

tégulo apresenta um grande processo rombo que circunda o êmbolo por trás. O

monofiletismo do grupo grassima poderia sustentar-se pelo PV reduzido a pequeno

gancho direcionado retrolateralmente e pelo condutor inserido em uma projeção tegular.

As espécies do grupo da espécie-tipo, A. lacertosa, apresentam o tégulo com projeção

triangular subapical, a qual aparentemente não é homóloga à área tegular esclerotinizada,

presente nos outros dois grupos do gênero.

Falconina e Septentrinna compartilham o processo cimbial retrolateral basal (PCr)

muito desenvolvido, o que poderiam evidenciar o parentesco destes dois gêneros. O

tégulo com processo ventral laminar (PTF), de inserção mediana; o êmbolo espiniforme,

com um processo basal e o epígino composto por uma dobra da placa epiginal que

encobre a abertura de copulação e, internamente, com extensões da placa dorsal

fusionadas às espermatecas primárias, são possíveis sinapomorfias de Falconina. O

tégulo com processo tubular de inserção apical e ápice bífido (PTS); o êmbolo laminar

e o epígino com uma bolsa ventral de abertura posterior, podem ser considerados como

sinapomorfias de Septentrinna.

Os representantes do gênero Simonestus apresentam uma série de caracteres que

podem atestar o monofiletismo deste táxon: região cefálica alta, subquadrangular, com

estreitamento cefálico quase nulo; espinhos ventrais das tíbias e metatarsos I e Il curtos

e grossos; garras das quelíceras curtas, menores que um terço do comprimento das

quelíceras. Considera-se a região cefálica alta como um caráter derivado em Simonestus.

Entretanto, a altura da região cefálica aparentemente está subordinada ao

desenvolvimento da musculatura das quelíceras, sendo portanto sujeita à modificações

adaptativas. Carapaças com região cefálica alta ocorrem independentemente em espécies

de Corinna e Stethorrhagus.

Em espécies de Creugas, um dos gêneros que retém a carapaça não-modificada,

baixa, com região cefálica pouco diferenciada, o reservatório tem apenas uma volta

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

140 BONALDO

ventral, visível por transparência na porção basal do tégulo, formando um “S”

característico. No grupo gulosus, o êmbolo apresenta uma divisão apical (DAC), a qual,

em C. gulosus, é conspícua apenas ao microscópio eletrônico de varredura. Entretanto,

o grau de desenvolvimento desta modificação embolar é variável, podendo estar restrita

ao ápice, como em C. cinnamius ou apresentar-se completa, desde a base do êmbolo,

como em C. falculus e C. bajulus. As fêmeas de pelo menos duas espécies deste grupo,

C. gulosuse C. cinnamius, compartilham um septo transversal no epígino, duas aberturas

de copulação posteriores, espermatecas primárias maiores que as secundárias e placa

vulvar posterior não-esclerotinizada. No grupo bellator, o êmbolo não apresenta a divisão

típica do grupo gulosus, mas um processo na região mediana (PEC). A hipótese de

homologia destas modificações embólicas pode ser rejeitada pela presença de ambas em |

C. gulosus. A presença de PEC em representantes de ambos os grupos de Creugas

sugere que esta é uma sinapomorfia para o gênero, assumindo-se que o caráter foi perdido

secundariamente em um subgrupo de espécies do grupo gulosus, evento talvez relacionado

ao incremento da divisão do ápice do êmbolo. No grupo bellator, a forma do PEC varia

de laminar em C. bellator a filiforme em C. lisei e a genitália feminina apresenta uma

ampla abertura de copulação anterior, espermatecas primárias menores que as secundárias

e placa vulvar posterior bem esclerotinizada.

Os gêneros Creugas e Tapixaua podem formar um grupo monofilético pela presença

do reservatório de percurso simples, com apenas uma volta ventral. Entretanto, Tapixaua

callida é uma espécie muito distinta, que apresenta uma série de caracteres exclusivos.

O palpo do macho tem o subtégulo dividido em duas peças independentes, uma proximal,

em “T” (STp) e uma distal (STd), com um grande processo cônico curvo que acompanha

a margem retrolateral do tégulo no bulbo não-expandido (PST). Outras características

conspícuas, provavelmente relacionadas à mirmecofilia, são carapaça rebaixada

abruptamente na região posterior, clípeo alto e presença de pêlos espatulados no ápice

dos fêmures e nas patelas e tíbias das pernas I. Estes pêlos podem desempenhar um

papel no mimetismo de formigas, de maneira semelhante à descrita para Pranburia

Deeleman-Reinhold (Corinnidae, Castianeirinae) por DEELEMAN-REINHOLD (1993), onde

a simulação do tagma cefálico é produzida pelo aglomerado de pêlos formado pela

junção das pernas 1 à frente do cefalotórax.

Os gêneros Methesis, Megalostrata, Erendira, Stethorrhagus, Parachemmis e

Tupirinna compartilham a presença de uma área circular esclerotinizada, posicionada

anteriormente ao espiráculo traqueal, denominada tubérculo traqueal. A hipótese de

que este caráter teve origem única em Corinninae sustentaria o monofiletismo deste

grande grupo de gêneros. Entretanto, a presença de tubérculo traqueal em Janduba e em

algumas espécies de Corinna complica a interpretação deste caráter, sugerindo um cenário

de múltiplas perdas (ou ganhos) independentes.

O monofiletismo de Methesis é hipotetizado pelo clípeo alto, maior que três vezes

o diâmetro dos olhos médios anteriores, tarso I longo, com o comprimento aproximado

do metatarso le vulva sem espermatecas secundárias. Megalostrata e Erendira podem

estar relacionados pelas quelíceras do macho relativamente compridas e afiladas, com

garras longas, ATR laminar e tégulo com processo prolátero-apical (PTM). Em

Megalostrata, o tégulo do palpo do macho apresenta reservatório tipicamente helicoidal,

porém o condutor está ausente. Uma vez que todos os outros gêneros de Corinninae

apresentam condutor, a ausência deste em Megalostrata é considerada uma perda

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 141

secundária e, portanto, uma sinapomorfia deste gênero. Em Erendira, o percurso do

reservatório do tégulo assume a forma de um “S” transversal ventral, com a porção

| terminal passando adjacente à segunda dobra e formando uma alça bem definida. Outro

caráter comum exclusivo das espécies do gênero é a PVP modificada em um par de

bolsas vulvares acessórias (BVE) aparentemente não-conectadas às restantes estruturas

da genitália feminina.

| Stethorrhagus, Parachemmis e Tupirinna formam um grupo provavelmente

monofiletico, definido pela presenga de escavacöes esternais e de uma apöfise distal

retrolateral articulada na tíbia do palpo do macho (ATV). Neste grupo, as espermatecas

' secundárias da vulva são pequenas e, em algumas espécies, inconspicuas. Estas estruturas

(chamadas bursae copulatrix em BonALDO & Brescovir, 1994) estão presentes em

praticamente todos os grupos de Corinninae e são geralmente bem desenvolvidas, maiores

| que as espermatecas primárias. O epigino das fêmeas de Stethorrhagus e Tupirinna

apresenta abertura de copulação única, geralmente com apenas um ducto copulatório.

Entretanto, em Stethorrhagus limbatus, observa-se a nítida separação do par de ductos

| copulatórios, apesar destes abrirem-se em cavidade única (BonALDo & Brescovir, 1994).

As espécies de Parachemmis apresentam ductos de copulação separados, abertos em

“cavidades distintas. A polarização desta série de transformação é dificultada pela

“ocorrência de ambos os estados em diversos grupos de Corinninae. A hipótese de

separação dos ductos copulatórios a partir de um único, sustentaria o monofiletismo de

' Parachemmis. Por outro lado, a hipótese de fusão dos ductos indicaria uma relação de

' grupo-irmão entre Stethorrhagus e Tupirinna, a qual poderia ser corroborada pela

presença de duas faixas laterais de coloração contrastante na carapaça, presente em

Stethorrhagus limbatus e nas espécies de Tupirinna. Neste caso, seria necessário postular

a perda deste padrão de coloração em todas as outras espécies de Stethorrhagus e a

“aquisição de uma terceira faixa contrastante, mediana, na carapaça dos representantes

“de Tupirinna. O palpo do macho com êmbolo de ápice bífido e ducto ejaculatório abrindo-

“se na bifurcação é uma sinapomorfia putativa de Stethorrhagus. Em todas as espécies

| deste gênero as fêmeas apresentam PVP bem esclerotinizada, cobrindo a metade posterior

| da vulva. Este segundo caráter foi considerado por BoONALDO & Brescovir (1994) como

mais uma provável sinapomorfia para Stethorrhagus. Uma amostragem ampla em

Corinninae evidenciou que PVP esclerotinizada é um caráter comum nesta subfamília,

' constituindo-se na continuidade póstero-dorsal da parede ventral do epígino.

| Os gêneros Attacobius e Ecitocobius compreendem aranhas extremamente

“especializadas, o que dificulta o estabelecimento de hipóteses sobre seu relacionamento

' com outros corinineos. A exclusividade de caracteres como a redução da espinulação

“das pernas, a ausência de sérrula nos enditos, lábio muito mais largo que longo e a

| presença, no tégulo do palpo do macho, de um característico processo tegular (PTA),

“deixa poucas dúvidas sobre o monofiletismo do grupo formado por estes dois gêneros.

"A monotipia de Ecitocobius e o fato de que se conhece o macho de apenas uma espécie

“de Attacobius impedem afirmações categóricas sobre o monofiletismo de cada um destes

' gêneros. BonaLDO & BrEscovIT (1997) hipotetizaram que o ápice dos tarsos das pernas

comprimido lateralmente e olhos médios anteriores demarcados são sinapomorfias de

' Attacobius e que a perda dos olhos posteriores e dos laterais anteriores e metatarsos das

| pernas com um espinho ventral apical mediano curvo são sinapomorfias de Ecitocobius.

Biogeografia. Exames preliminares da fauna africana e asiática de Corinnidae

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

142 BONALDO

sugerem que Corinninae, tal como delimitada por BonaLDO (1997), seja um grupo de

distribuição primariamente neotropical. Considerando-se a exclusão de Mandaneta,

Procopius, Pseudocorinna e Oedignatha de Corinninae, e a correção da alocação das

espécies descritas em Corinna para a África, a subfamília Corinninae estaria representada

no Sudoeste da Ásia e no continente africano por apenas uma espécie, Creugas gulosus,

provavelmente o corinídeo mais comum em ambientes antrópicos na América do Sul.

Esta espécie é também comum nas Américas Central e do Norte. LEHTINEN (1996b)

reportou a ocorrência desta espécie (sob Corinna cetrata Simon) em diversas ilhas do

sul do Pacífico, listando-a como espécie de origem Neotropical. Uma vez que Creugas

gulosus pertence a um gênero neotropical putativamente monofilético, a melhor

explicação para tal distribuição é a dispersão antropocórica. Outras duas espécies de

Corinninae com ampla distribuição são Xeropigo tridentiger, espécie descrita para a

Ilha de Santa Helena, no Oceano Atlântico, mas comum nas Américas do Sul e Central,

e Falconina gracilis, relativamente abundante na América do Sul, mas com vários

registros confirmados no sudoeste dos Estados Unidos. A hipótese de que os coriníneos

se diferenciaram na Região Neotropical, após a quebra de Gondwana, deverá ser testada

à luz do exame mais detalhado da fauna africana e asiática de Corinnidae.

Agradecimentos. Ao Prof. Dr. Amo Antonio Lise, pela orientação na Tese de Doutorado. Ao Curso de

Pós-Graduação em Ciências Biológicas da Universidade Federal do Paraná, Curitiba, por ter possibilitado o

desenvolvimento do Projeto de Doutorado. À Coordenação de Aperfeiçoamento do Pessoal de Ensino Superior

(CAPES), pela concessão da Bolsa de Doutorado. Ao MCN, Porto Alegre, onde este trabalho foi desenvolvido,

pela cedência das instalações e equipamentos. Aos curadores das instituições citadas, pelo empréstimo de material.

Aos Drs. €. Rollard, P. D. Hillyard e R. Jocqué, pela gentil acolhida e pelo acesso, respectivamente, às coleções do

MNHN, Paris; BMNH, Londres e MRAC, Tervuren. À Dr C. Deeleman-Reinhold, Ossendrecht, por ter

proporcionado acesso a seus manuscritos e à amostras de aranhas do sudoeste asiático. As pesquisadoras do MCN,

Erica Helena Buckup e Maria Aparecida de Leão Marques, pelas indispensáveis críticas advindas da leitura de

diferentes partes e versões do manuscrito. Aos colegas e amigos Antonio Domingos Brescovit (IBSP) e Luciano de

Azevedo Moura (MCN), pelas sugestões e apoio em diversos momentos da execução deste trabalho. À Maria

Cristina dos Santos Costa, pelo incentivo.

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ÍNDICE (Nomes válidos em itálico) |

cao Aa en qi NS DISC Oa E nn “|

abalosiConinnata ee ee 71 DIN CE nn o |

be no 71 calda, ap au... 110 ||

en: wa) are ee io 65 capito, Corinna... o ae 51

Te Ga a 99 capito, Drassus ...........22..20 0 one EEE 51 |

IAchalaicola ee er ees 136 COPHO, STUPO eric 2-2 a

aenea COHINNaeesseesnsesunesseuscissssnrissenennroerssaeraneeen 48 Capito,Elypsiuolusf En o

ACneUSTBAUSUSA aaa un enero possa dae 48 casei, Cora RAR ses a

abomeenilosa COMIAM nenn 78 cetrata, Corinna ............. Rn EEE 99

ulbomasulosa Halo JM ds NDA O 78 Sao Creugas: esc cs vees REN E

alticeps CONAN ee 39 ICAMIMAS .. 2204238 43642820.4 oo ee os

AlHGEPSTIDIESTUSIE == so sanear o cao sue o eier 40 anna, Corinna ..........teeesssssesemmeneseseessssstee 102

alticeps, Hypsinotus .................. crer 39 E Snake Creugas a 2

altiftons, Diestusk nee een 41 alan! 2 aba eba siri 22 EEE em

andına, CORTA sorio en 40 cleonei, Corinna SS ST 67

rule een 40 Clubionidae Keennnnetteenneeteennertteeenerereeneeteenenneerene 7

SR En GU SR Den 98 colombo: Corinna... and pe 52

> Cyeugasy na a UR 98 consobrina, Corinna... >

Erler, Gone een en 99 Sn RR EEE Le ecotscrrocuconocroocc0000000 Su

anopkysaria Conana MA 98 En RPPN O RR o anca ooo cenas acooocanoasosadé 8

apophysarius, Creugas .... itinere 98 Corinni [o 1 ABRRBENIERRRREREEREER E PE C6:0500000:00:10:02000000500000060 7

a N EN 123 Corinninae un... ee ER 8

atroxiMesalos tratar ra aaa a 123 Crassipalnıs HalconmnaE === is

E SDR MON SO 136 crassipalpis, Corinna aa te

ini (BI ipa ria 62 Creugas Aenseennntennteennteensstennteanrtensetensseeenstennsene 96

Dee is ea 62 cribosa, Corinna... ne aa 19

baue Conan ne LEE gg | Delozeuema se o

bajulus, NO nen css descansa a 98 depicia, Megalostrata sa nie

bellatonSLUpO Senses catar eua anca a 104 depicium, Delozeugma ...... ums un 2

oe RR 105 Diestus MERMO NO ecococöconcosccö000S0000000:000 37

bellator Cree o A 105 Drassoidae . RR E co osso oc banocoosncoconcesoe 7

bellator, Hipsinotus ............... ceia 105 ducke, Corina... rms 46

De reseaenne nas (04 cchinus, Äbapeba sa gu |

pentandia Creio custas 104 echinus, Corinna TTS STE 67

Iilenileamein. (Onstremein nn 85 Ecitocobius BRR o or E rrrncaroodcodosooso 136 .

isfleallamaia, (CORTE ne en 85 egregia, Corinna BRR ro rcrnroS oiee oocoos 62 |

DUCINCRÃO, SUP OR SERIEN 85 Ben Fer BEN ET de

Bicaleanata Seprenininna mm 85 epicureana; Corinnal-.20= 2 aa 98

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

| Taxonomia da Subfamília Corinninae (Araneae, Corinnidae)... 147

I erieureanus, Greugas........n nnd 98

PITEHAUNGbrRR en .neesnenssennnensessnssnsneennsehnnennsndessantene 121

| FAÜCOTEE eeausesenarasese ara euch Deren er 76

Nalconinaseeeneaeessnnsenesssenzecnsaessöensaheontpennesndee en 76

| teia Cor BEE 98

|ieniias, (Ciro Ear e Ren RP RR 98

| aves Coin 57

| flavipes, Hypsinotus .....................s seen 56

| formidabile, Delozeugma ................ 118

| formidabilis, Megalostrata ...............................- 118

| iredericci, Chemmis .............. m... 118

(SOU (ELOA Ai (VS ER BEBE 127

| giganiça (Corn me Re 63

| giganteus, Paradiestus ........ueuuersersensnennennnennennnn 63

PLACIPESACOLNNAR. ne nnenenenneesanerenerennes nennen nenn 99

gracilipes, Hypsinotus ................ sie 99

Bel Corno 2 RERAE 79

| ETaGıllSWRaIGONIMaR..eeeneseeennnannnensnnenenehnessneseeeenee 79

| giras CORRO RR Ra RR RR 40

RErandis Lausüsse-.neseeeseee este, 40

WerassuimawAbapeba.........22n.2.. Mu 73

| gessine, Come 73

| EOSSÓA COI OR de PERENE SE 73

Iranicae, Abapeba.....0.. men 67

| amics oi 67

| ileso, Corro ER EEERN: 99

gulosos, Connie cosa ee 99

| guloso (Girafa RR ro Ee 99

| hassleri, Parachemmis ... iene 127

hassleri, Stethorrhagus ...........................n 127

hoeieniaAbapebar...........n...0.0.Benaseseosseenneen 69

KumlisI@omnna..................... dera eserirateteaeana 56

| humilis, Hypsinotus ................u022020000e ne nsneneenennn 56

E psino tus seien ee 96

imnonnata CoOmnna rn... re 99

WOGNILND Ape eae recsriasro ace essua dona aiandcosasa des 67

OGU CON Ne Rs sis eneresar sesta so qutaro naigen saias 45

KOCHIMDIESTUSE RR. nee een een 45

O GIRO RU OR = os ac nrso reasons acmrisncsaroniimadenaganvaandenio 44

lacertosa, Abapeba ...........uuuuu2uneeeseneneeeneennenenennn 68

lacertosayEortinna....................0ueeeeeee 68

VaGEHIOSANSWUBOL. .exneneeeeneasessusneeanernnanesnnsnrehenkenge 68

LATSTS as aaa RD 37

Sai CANO Sosetrariora ESSES ec RE 106

lohmanderi, Megalostrata ................................... 123

Inetuosa, Abapebaceeeaeesscensecasneseceeesnennnenaneannene 67

MluelIosar@orinna ..............0.essn: 67

Miugubris, Abapeba ......c.eceeescessecsseanenaseesäsessensenee 67

nenn, (Oo ee 67

luteomaculata, Corinna ...............cueeeeesaeeeenennne 122

luteomaculata, Erendira ........ is 122

inaculata (CO ee 125

maculatus, Hypsinotus ...............ceeeesensenennen 125

maculatus, Stethorrhagus ................uee nennen 125

manauara, Parachemmis ....... sie 128

IMesalosinata a N ann 116

IMelanippes ee 116

melo onnnas. 2. ee É cana 78

melloi4Ralcomar.....e.. een 78

lo, INCNCO DINO aoonabBonAcbo ae scan deaaaBanob oe 78

Menalppe =. =..0a.2 crase pesasssarnss puono co (RREO ad e 116

leite isa dean ae 113

mordicans, Delozeugma .....................uueenee 118

mordicans, Megalostrata.......................02000200.0 118

Morena == are ee 136

INOUNa On 42

imucronata ConnmaB 98

mucronatus, Creugas .......... ci icererenacerenaaran 98

Myrmecihdaer. nee ee 7

IMiynmecoDlusi. neunten 136

IM IME QUES TE, ee 136

nava Cornnar, +. MA. do es el: 98

MAM CREIO (Sh Reese de cf e ROTAS o Sa 98

nervosa Cornnal araras cesta ee 99

DIE CAUSAC OL A 98

Man an SONS 98

mienicanstS parasSuspa asa 98

nitens Cora A ee de ser ee 41

nitens Ely p Sino fu dana 41

oceldentalisiDiestusE 93

occidentalis, Simonestus ......... serranas 93

pallidoguttata, Corinna .........................22222022.0:> 122

pallidoguttata, Erendira ......... sima 122

BarachemimiSser nenne 126

IDanadlestlsk ne es 60

paradoxa, Corinna .......ueceeeeneeeeseeneseeeesenneseeneneen o. 84

paradoxa, Septentrinna ........... teens 84

penteillatalCornnapr a ana 62

penicillatus, Paradiestus ........ sesmarias 62

Denn atom AD ip e la E na aaa 67

pennata\@ounnak ee sata 67

Bhanopülusfte een ea atoa ndo genen ernennen nern 96

[COVAS SECO NIRO cocasoooaBocaoasaeaodpetoaspococesobaeccne 122

pictitorax, Megalostrata ..................222022242220222000> 122

PUR OL a 98

Docs, CANZUS cocosnasseeeeenseanecadeamemeaassooseoaececor 98

plumatus, Hypsinotus ................ ee 98

potosi, Septentrinna..........eeeneeeseesseessensnsnennennnennne 89

praeceps Cornnnal an 98

prqeceps (Creu Bash = ccradas nes a cas cas sema pa boa eso ars een 98

Eranopisen elek 96

pseudobulbula, Corinna ...................2...22u222022202200.> 93

pseudobulbulus, Simonestus .......... series 93

punctataBrano pisa een 99

punctigera, Melanippe .................. io. 118

raptor Corina» ds are es, asas Ensaio RR 118

TaAptOEIypSINONU SE ren 118

taptrix, (COmnna. =... stress anannao don arena aa seen 118

raptrix, Megalostrata ........ item 118

recua: MCOTINMA saçer img raracta co sor evas Se dino apo seiva tacanES 49

Tetusa (Corinnap = Moscas ee ee 84

Ne busa ES ep ten bra Rea en opa ao 84

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

148

No clan ga!

robusta; ConnNakss.aneascne ee Rasa 93

robustus, Simonestus zueseeeeeseeseesnnsnnnenenennnnenennnnnnnnn 93

roteas TI UOANO) eocsconononseoaasecaseapeeooasaasseaosaco ne 133

Turis (CORE ssonassenano daBerameaaaepocraaseeaoanonecesends 40

KUDTIDES,BTUPO. -..cacarsoncvado sorosoaea cas dojasa ca apena 40

rubripes, Hypsinotus .................s sirene 67

mubipesSparassusBa cnc 40

Saga, Abapeba.....nur.ssdesssescsöscesnnsunsansenstunreren ee 67

SARA, COPA ars quacos ves aeona eine scene ee 67

scutulata Cormnal cs 57

seutulatus Nero piso Ra aaa np 56

semiluna; Corina: scasessoacasesescamiada as psose ee 93

semiluna, Simonestus ....nnasseseseenensssesennnnennennneenne 93

SAO MICHDESUS qosoncoossoooosoocoasoooassaaaassacagastocasi 114

senegalensis Corina 99

senegalensisiCreugas 99

SEDES, IDHESAUS aocoacoasaooooasosocoaadacasaesssasaanacodcodae 94

separatus, Simonestus .....uueennnnssannessnnnessenensnenenenen 94

SCDLenIRinnAS caes estenano seroso ne anel seen oca ee 83

seniceusibhanopiltis PR 99

sicarioides, Abapeba ........uuunecessessnesssueeneennnennnenenn 67

SICAHLO1dESAEAU SUSE 68

sılvauca-ECOHNNd.Heee ee 98

SUNS OnEN Sa 98

SUMONESTUSS macae re ssa ee 92

smedigani Coina ER 58

smedigari, Xeropigo ........2.02220222unennennnenenennannnnenn 58

sperataiMegalos trata 118

StECKlERACh ENT SEE 86

SESC, SIMSERNDER seocsoooseenenconscosseesecoosanacasaaano 86

DLC lo LOUQUIS Ros aa=e caco de As ee 125

sigmatica Corina san 19

sigmatisatalCormnnale ao ana papa an na 79

subsienatal Corina 122

Recebido em 30.06.1999; aceito em 13.03.2000.

BONALDO

subsignata, Erendira .............2on22unsoennsssnnensesnennee 122

tahitica, Corinna ......uuussseeeeeeeeee nee ER 99

Tapixaüa.......::. 20004002 2H0R Tannen ne nn 108

taruma Abapel nen nora dana 74

tenubra; Cormnal.... 127

tomentosa, Corina... 56

Tranguilinus ................:..0:.22.2.22 EEE 37

indentiger Corinna. ER 56

tridentiger, Olios...................2. 00 20a 56

tridentiger, Xeropigo..........u022u0220ennneenenenneeennenneen 56

tridentigera, Corinna ..........eescessseessuessnnnnnnnnnneneneenn 57

tridentigera, Heteropoda ..................222u2220000u02200 56

indentma Corinnarr 57

trilineata, Tupirinna .......uuueeseessnnennensnenennersneenen 134

trilineatus, Parachemmis .................2222022aneeeenn 134

Tupirinna ...cesêessas siso ssoaaro arco ao ee REEEE 131

uncata, Corinna... nn 98

uncatus, Creu gas. =. oro onda nona nn RAR 98

validus, Diestus ..............:0...0..000 RR 93

ee, SL OASVIS consrme eme RE 93

venefica, Megalostrata .................22u22u222022002nnoneen 118

venenifica, Megalostrata ...........uuesuersersserseeeneeneenn 118

venezuelica Corinna... 40

venezuelica, Medmassa ............cccceeeeneenennennnnennnnnn 40

venifica, Megalostrata ...............eouessaeesneeennaennene 118

vertebrata, Corinna 79

vitiosa, Corinna ........0u.00uuue ee 62

vitiosus, Hypsinotus .......ursccssnsssesnnsnnennansnennennaennn 62

VILLO SUAS Rar aLal VEIAS ooo RR RR 62

wheeleri, Abapel a. hoo no aaa 68

wheelert, Corinna... 68

wolleboeki, Cormnal 2 99

0,0100) 01h40 DRE RR Ce .200:2000009-05503500:2500 54

Yucatan, SWPO ...e..ucncanennen ee RE 88

Yucatan, Sepientninmnai assa san a 88

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 3-148, 5 de novembro de 2000

POLINIZAÇÃO DE PASSIFLORA EDULIS F. FLAVICARPA

(PASSIFLORALES, PASSIFLORACEAE), POR ABELHAS

(HYMENOPTERA, ANTHOPHORIDAE) EM CAMPOS

DOS GOYTACAZES, RIO DE JANEIRO

Magali Hoffmann!

Telma N. S. Pereira!

Maria Beatriz Mercadante!

André Raeli Gomes!

| ABSTRACT

POLLINATION OF PASSIFLORA EDULIS F. FLAVICARPA (PASSIFLORALES, PASSIFLORACEAE)

BY BEES (HYMENOPTERA, ANTHOPHORIDAE) IN CAMPOS DOS GOYTACAZES, RIO DE JANEIRO.

| The yellow passion Passiflora edulis f. flavicarpa Deg. is allogamous, self incompatible, and it depends of

| insects pollinators to disseminate the pollen grains. The field work was conducted at Campos dos Goytacazes,

| Rio de Janeiro, Brazil, from October 17 to November 9 and December 12 to 21, 1995. It was analyzed 1565

| flower buds, from which 423 showed well developed ovaries, five days after opening, this represents 27% of

| fruit set by natural pollination. It was observed 76,86 % of completely curved flowers, 21,22 % of partially

| curved flowers, and 1,92 % flowers without curvature. Five species of bees where observed on the flowers,

| from which two were the effective pollinator of yellow passion flower: Xylocopa (Megaxylocopa) frontalis

| (Olivier, 1789) and X. (Neoxylocopa) ordinaria Smith, 1874.

KEYWORDS. Xylocopa, Passiflora, pollination, eastern Brazil.

INTRODUÇÃO

As plantas da família Passifloraceae, entre as quais Passiflora edulis f. flavicarpa

Deg. (maracujá-amarelo), são dependentes da polinização cruzada para a formação de

| frutos. Suas flores apresentam mecanismos que dificultam a auto-polinização, como a

| presença dos estigmas no ápice do androginóforo, em posição superior às anteras; a

| ocorrência do fenômeno da protandria e a auto-incompatibilidade dessa espécie e de

1. Centro de Ciências e Tecnologias Agropecuárias (CCTA), Universidade Estadual do Norte Fluminense (UENF), Av. Alberto Lamego, 2000, CEP

28015-620, Campos dos Goytacazes, RJ, Brasil.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 149-152, 5 de novembro de 2000

150 HOFFMANN; PEREIRA; MERCADANTE & (GOMES

outras do gênero, reforçam a alogamia. Por outro lado, as flores de muitas Passifloraceae

apresentam características atrativas para vetores de pólen (abelhas, lepidöpteros, morcegos

e outros): são grandes, coloridas, exalam forte odor e possuem néctar em abundância,

localizado na base da corona (CamiLLo, 1987; Teixeira, 1995). Além disso, o maracujá-

amarelo deve ser polinizado por pólen de flores de outras plantas da mesma espécie

(AKAMINE & GIROLAMI, 1957; NisHIDA, 1958; Manica, 1981; Souza, 1994; TEIxEIRA, 1995).

As flores do maracujá-amarelo abrem uma única vez, próximo as 12 horas e fecham

à noite. Se não forem fecundadas, elas murcham e caem (Manica, 1981; Teixeira, 1995).

A quantidade de pólen depositado no estigma determina o tamanho do fruto, a quantidade

de polpa e, consegüentemente, o peso do fruto (TEIXEIRA, 1995). Segundo AKAMINE & |

GiROLAMI (1959), o maracujá-amarelo apresenta três tipos de flores que se diferenciam |

pela curvatura do estilete no momento da antese o que determina a posição relativa dos

estigmas em relação às anteras. RUGGIERO et al. (1976), ao descrevê-los, denominou-os

de totalmente curvos (TC), parcialmente curvos (PC) e sem curvatura (SC). Estas diferenças

só são observadas duas horas após a abertura da flor. Nas flores do tipo TC, os estiletes

curvam-se, deixando os estigmas abaixo do nível das anteras, facilitando a polinização.

Nas flores do tipo PC, os estiletes curvam-se parcialmente, deixando os estigmas acima

do nível das anteras, formando um ângulo de 45, enquanto nas do tipo SC, os estiletes

não se curvam, ficando o estigma acima das anteras, formando um ângulo de 90,

dificultando a polinização.

A disposição das peças florais exige que o inseto polinizador tenha um tamanho

avantajado, para que seu corpo atinja as anteras (RUGGIERO, 1980). As abelhas do gênero

Xylocopa Latreille, 1802 (comumente chamadas mamangavas-de-toco) apresentam este

porte e são consideradas os agentes polinizadores mais eficientes dessa cultura (RUGGIERO,

1980; Manica, 1981; CAamiLLo, 1987; Souza, 1994; Teixeira, 1995). NiısHiDA (1958)

constatou, no Havaí, que X. varipunctata Patton, 1879 e Apis mellifera Linnaeus, 1758,

são os efetivos polinizadores do maracujá-amarelo. TEIXEIRA (1995) cita que espécies de

Anthophoridae, Apidae, Oxaeidae, Halictidae e Vespidae (Hymenoptera), foram

encontradas sobre as flores do maracujá-amarelo.

Objetivou-se identificar as abelhas que visitam as flores do maracujá-amarelo e

determinar a porcentagem de formação de frutos, através da polinização natural, na região

de Campos dos Goytacazes, Rio de Janeiro.

MATERIAL E MÉTODOS

O experimento foi conduzido na área do Modelo de Fazenda, situada no Colégio Agrícola Antônio

Sarlo, município de Campos dos Goytacazes, RJ, Brasil, numa plantação de um hectare de maracujá-amarelo,

no período de 177 de outubro a 9 de novembro e de 12 a 21 de dezembro de 1995. Botões florais em início de

abertura foram marcados por meio de fitas plásticas coloridas. Efetuaram-se nove observações, com marcação

dos botões florais, cinco no primeiro período e quatro no segundo, sendo que em cada dia eram marcados em

média 220 botões florais. Após cinco dias de cada marcação, contou-se o número de flores vingadas. As flores

foram classificadas quanto ao tipo de curvatura do estilete, proposto por RUGGIERO et al. (1976). Setenta e três

dias após o vingamento das flores, foram colhidos 300 frutos para a contagem do número de sementes e

tamanho dos frutos. Coletaram-se abelhas nas flores, apenas quando não era possível o seu reconhecimento

visual no campo. Os espécimens foram identificados pelo Pe. Jesus Santiago Moure, Universidade Federal do

Paraná e pelo Dr. João Maria Franco de Camargo, Universidade de São Paulo e estão depositados no Museu

de Entomologia, Universidade Estadual do Norte Fluminense (UENF).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 149-152, 5 de novembro de 2000

Polinização de Passiflora edulis f. flavicarpa (Passiflorales,... 151

RESULTADOS E DISCUSSÃO

As espécies de abelhas coletadas e/ou observadas no maracujazal foram

Xylocopa (Megaxylocopa) frontalis (Olivier, 1789), X. (Neoxylocopa) ordinaria

Smith, 1874 (Anthophoridae), Eulaema (Apeulaema) nigrita Lepeletier, 1841, E.

(A.) cingulata (Fabricius, 1804) e Apis mellifera Linnaeus, 1758 (Apidae). As espécies

de Xylocopa apareceram somente após às 14 horas, quando as flores se encontravam

totalmente abertas e receptivas. As duas espécies do gênero Eulaema Lepeletier,

1841 foram observadas pela manhã nas flores semi-abertas, que tinham estado abertas

no dia anterior e A. mellifera foi encontrada pela manhã, pousada em botões florais

e, à tarde, nas flores coletando pólen. CamiLLo (1987) constatou em Ribeirão Preto,

SP, que as espécies que mais frequentemente visitavam o maracujazal eram X. (M.)

frontalis e Xylocopa (Neoxylocopa) suspecta Moure & Camargo, 1988 e considerou

esta última, como a mais eficiente, devido ao maior tempo de permanência e ao maior

número de visitas às flores.

Dos 2000 botões florais marcados, foram encontradas 1565 flores com marcação,

423 delas com o ovário bem desenvolvido, representando 27% de frutos vingados através

da polinização natural, que foi efetuada pelas duas espécies de Xylocopa observadas na

área estudada, sendo estas as mais ativas no período, uma vez que A. mellifera só foi

encontrada esporadicamente na plantação, mesmo havendo na área um pequeno apiário

com 11 colméias. AKAMINE & GIROLAMI (1957), (NisHiDA 1963), MARTIN & NAKASONE

(1970) e Murray (1976) consideraram A. mellifera uma polinizadora eficiente do

maracujá-amarelo. Porém, no Brasil, esta espécie é indicada por RuGGIERoO (1980) e

TEIXEIRA (1995) como responsável pela diminuição acentuada da frutificação, quando

em alta concentração na plantação, prejudicando a polinização pela remoção, às vezes,

completa de pólen, mesmo na presença das mamangavas-de-toco, que ao coletarem o

néctar, não carregam o pólen.

Quanto aos tipos de curvatura dos estiletes, foram observados os seguintes

| percentuais: TC (76, 86 %), PC (21,22 %) e SC (1,92 %), sendo que nenhuma flor do

tipo SC vingou frutos, caindo 48 horas após a abertura. Comparando-se com os valores

obtidos em Jaboticabal, SP, por Ruccigro et al. (1976) ( TC, 70,79 %; PC, 23,28 % e SC,

1,92 %), verifica-se que os resultados são similares. As flores do tipo SC apresentam

esterilidade feminina e, mesmo quando polinizadas com pólen estranho, não frutificam

| (AKAMINE & GIROLAMI, 1957; RuGGiERo et al., 1976). Pereira, Louro & Hoffmann (1996)

apud Horrmann (1997) observaram sob microscópio confocal, que nas flores do tipo

SC o megagametófito não é normal, isto é, não apresenta oosfera. Portanto, a esterilidade

observada nessas flores é provavelmente devida à ausência desse constituinte do saco

embrionário, uma vez que a oosfera é importante para a formação do embrião.

Com relação aos frutos vingados, consideraram-se três tamanhos: pequeno, com

| diâmetro de 6,25 cm (na parte mais larga), contendo 125,1 sementes em média; médio,

* com diâmetro de 7,45 cm, contendo 258,5 sementes em média e o grande, com 9,01 cm

de diâmetro, contendo 404,0 sementes em média.

O percentual de 27% de polinização natural pode ser considerado uma boa taxa de

' polinização, segundo Evandro Camillo (comun. pess.); porém, estes frutos permanecem

“no pé até a maturação, que ocorre cerca de 70 a 80 dias após a polinização. Neste período

| podem ocorrer queda de frutos ainda näo-maduros por pragas, moléstias, deficiências

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 149-152, 5 de novembro de 2000

152 HOFFMANN; PEREIRA: MERCADANTE & (GOMES

minerais e também por condições climáticas adversas, podendo baixar drasticamente o

percentual de frutos maduros.

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Recebido em 03.05.1999; aceito em 21.10.1999.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 149-152, 5 de novembro de 2000

ULTRAESTRUCTURA DE LOS ACINOS SUDORÍPAROS DE LAS

GLANDULAS PELVIANAS DE CHAETOPHRACTUS VILLOSUS

(MAMMALIA, DASYPODIDAE)

Silvia Estecondo!

Elena J. Galindez!

Emma B. Casanave!?

ABSTRACT

ULTRASTRUCTURE OF SUDORIPAROUS ACINI OF PELVIAN GLANDS OF

CHAETOPHRACTUS VILLOSUS (MAMMALIA, DASYPODIDAE). The acini of pelvian glands of

Chaetophractus villosus (Desmarest, 1804) consisted of an inner layer of secretory cells and an outer layer of

myoepithelial cells. Secretory cells have numerous secretory vacuoles. The secretion is released by exocytosis.

Myoepithelial cells have numerous myofilaments that occupy much of the cytoplasm. There is a third cell type

with an extremely electron-lucent cytoplasm.

KEYWORDS. Pelvian glands, sudoriparous acini, ultrastructure, Chaetophractus villosus.

INTRODUCCIÓN

Sobre la línea media del caparazón pelviano de algunos dasipódidos existen

glándulas tegumentarias especializadas denominadas glándulas pelvianas. Las mismas

están ubicadas en protuberancias que presenta el caparazón óseo en su cara interna

(LAHILLE, 1895; Pocock, 1913; FERNÁNDEZ, 1922). En Chaetophractus villosus (Desmarest,

1804) y en Euphractus sexcinctus (L. 1758), dichas glándulas están constituídas por

acinos sebäceos y acinos sudoríparos (FERNÁNDEZ, 1922; ESTECONDO & CASANAVE, 1998).

En Chaetophractus vellerosus (Gray, 1865) solamente hay acinos sudoriparos (ESTECONDO

et al., 1997). En este trabajo se estudia la ultraestructura de los acinos sudoriparos de las

glándulas pelvianas deC. villosus.

MATERIAL Y METODOS

Ocho adultos de C. villosus, de ambos sexos, provenientes del área de Bahia Blanca, Provincia de

Buenos Aires, Argentina, con pesos comprendidos entre 3,000 y 3,500 g, fueron anestesiados con Ketamina

1. Depto. de Biología, Bioquímica y Farmacia (DBByF), Universidad Nacional del Sur (UNS), San Juan 670, 8000, Bahía Blanca, Argentina (e-

mail:silviest@criba.edu.ar)

2. Investigador CONICET

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 153-158, 5 de novembro de 2000

154 ESTECONDO; GALÍNDEZ & CASANAVE

(3,5 mg/k, i.p). Con un torno manual, se seccionó el caparazón extrayendo las placas que contenian las glândulas

pelvianas. El material se fijó por inmersión durante 6-12 horas, en el fijador de Karnovsky (KARNOVSKY,

1965) diluido en buffer (GLAUERT, 1975) cacodilato de sodio 0,1M, pH 7,4, a 4 °C. Se decalcificó por 12-20

días en EDTA 4,15% (DELDAR et al., 1985), a 4 °C. Una vez decalcificado el material, se procedió a cortar

piezas de Imm de espesor, se lavaron con buffer cacodilato y se postfijaron durante 2 horas en tetróxido de

osmio 2% a 4 °C, se deshidrataron en acetona de concentraciön creciente y se embebieron en resina Spurr. Se

cortaron secciones ultrafinas con un ultramicrótomo LKB, usando cuchilla de diamante, se contrastó con

citrato de plomo y acetato de uranilo y la observaciön se realizó con microscopio electrónico Jeol CXII.

El material está depositado en el laboratorio de Histología Animal de la Universidad Nacional del Sur,

Bahía Blanca, Argentina.

RESULTADOS

Los acinos sudoríparos están formados por una sola capa de células secretoras y

separando a éstas de la membrana basal, se ubican células mioepiteliales (m, fig. 1). Los

núcleos de las células secretoras presentan un nucléolo (n) generalmente excéntrico (fig.

1). Estas células se caracterizan por la presencia de numerosas vacuolas (>) de diferentes

tamafios, muchas de ellas en proceso de fusión, que ocupan gran parte del citoplasma

apical (figs. 1, 3). Las vacuolas están rodeadas por membrana, su contenido es filamentoso

con algún cuerpo más denso (fig. 2) o con material de aspecto membranoso (fig. 3). El

contenido se vierte a la luz por un proceso de exocitosis (fig. 2).

El retículo endoplasmático granular y el aparato de Golgi están muy desarrollados,

las mitocondrias son muy numerosas y hay abundantes ribosomas libres. La superficie

apical posee microvellosidades (*, figs. 1-4). Lateralmente, en la porción apical de la

membrana plasmática, se distinguen complejos de unión entre células adyacentes, formados

por uniones estrechas u oclusivas y desmosomas (d) (fig. 4). Entre las células secretoras

y las mioepiteliales hay interdigitaciones (1) y desmosomas (fig. 5).

Los núcleos de las células mioepiteliales son ovales o elongados (fig. 6). El

citoplasma es bastante homogéneo y oscuro, de apariencia fibrilar, debido a que está

ocupado en su mayor parte por miofilamentos (flecha larga, fig. 6). Hay gran cantidad de

vacuolas pinocíticas (v) alrededor de la membrana plasmática (fig. 7).

Basalmente se encuentran procesos celulares característicos, que se extienden dentro

de la membrana basal (fig. 6). También hay hemidesmosomas (flecha corta) que aumentan

la adherencia (figs. 1, 5, 7). Las células mioepiteliales pueden estar unidas entre sí por

desmosomas (fig. 7) o por interdigitaciones. Entre las células mioepiteliales y las secretoras

se observan algunas células con citoplasma de menor densidad electrónica (c, fig. 8),

poseen escasos organoides, en algunas se observan centríolos (cb, fig. 9).

En el tejido conectivo que ocupa el espacio interacinar, se encuentran vasos sanguíneos

y fibras nerviosas amielínicas. En las fibras nerviosas se observan mitocondrias, neurotúbulos

y dos tipos de vesículas: abundantes y pequefias vesículas claras y algunas mayores con centro

denso (fig. 10). También se encontraron terminaciones nerviosas amielínicas con ambos tipos

de vesículas (t), entre las células mioepiteliales y las secretoras (fig. 11).

DISCUSION

Las células mioepiteliales son de origen epitelial y contráctiles. Poseen

miofilamentos semejantes a los del músculo liso (ELtis, 1965) y uno de los componentes

de las miofibrillas es la actina (EMERMAN & VocL, 1986; Moore et al., 1987). La función |

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 153-158, 5 de novembro de 2000

Ultraestructura de los acinos sudoríparos de las glándulas... 155

Figs. 1-5. Chaetophractus villosus: 1, porción de un acino sudoríparo; 2, vacuola secretora en proceso de

exocitosis; 3, citoplasma apical de una célula secretora; 4, unión lateral entre dos células secretoras; 5, unión

entre dos células secretoras y una célula mioepitelial (d, desmosoma; i, interdigitaciones; m, célula mioepitelial;

n, nucléolo; s, célula secretora; cabeza de flecha, vacuola en proceso de fusión; flecha corta, hemidesmosomas;

flecha larga, miofibrillas; *, microvellosidades). Barras: 0,25 um, figs. 2, 4; 1 um, figs. 3, 5; 2 um, fig. 1.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 153-158, 5 de novembro de 2000

156 ESTECONDO; GALÍNDEZ & CASANAVE

Figs. 6-11. Chaetophractus villosus: 6, célula mioepitelial; 7, porción basal de una célula mioepitelial con

vacuolas pinocíticas; 8, célula con citoplasma de baja densidad electrónica; 9, citoplasma de una célula de

baja densidad electrónica con centríolos; 10, terminaciones nerviosas en el tejido conectivo interacinar; 11,

terminación nerviosa entre dos células secretoras y una célula mioepitelial (c, célula con citoplasma de baja

densidad electrónica; cb, centríolos; d, desmosomas; g, aparato de Golgi; m, células mioepiteliales; p, procesos

celulares; s, célula secretora; t, terminación nerviosa; v, vacuola pinocítica; flecha corta, hemidesmosomas;

flecha larga, miofibrillas). Barras: 0,25 um, figs. 7, 9; 0,37 um, fig. 11; 0,50 um, figs. 6, 10; 2 um, fig. 8.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 153-158, 5 de novembro de 2000

| Ultraestructura de los acinos sudoriparos de las glándulas... 157

| de estas células incluye la contracción cuando la gländula es estimulada para secretar,

comprimiendo las células parenquimáticas subyacentes, ayudando así a la expulsión de

la secreción (REDMAN, 1994).

Las células mioepiteliales difieren en forma y distribución en las distintas glándulas y

| podria ser que estas diferencias se relacionen con propiedades físicas de la secreción (NAGATO

| etal., 1980). Según algunos autores, la variedad de configuraciones observada es difícil de

| asignar a la función general de expeler los productos de secreción hacia la luz. Entre las

hipótesis emitidas, Saro et al. (1986), consideran que en vez de actuar simplemente como

| una bomba expelente, la función de las células mioepiteliales puede ser proveer soporte

| mecänico a la pared de los acinos secretores. Esto permitiría resistir el aumento de presión

hidrostática luminal. SaroH et al. (1994) sugerieren que estas células parecen mantener el

| contorno de los acinos, sirviendo como exoesqueleto de los mismos. Para REDMAN (1994),

| también podrían ayudar en la propagaciön del estímulo secretorio u otro.

Aunque Hisgs (1958) sugiere que las células mioepiteliales de las glándulas

| sudoríparas humanas podrian desarrollarse en células secretoras y Saro et al. (1989),

| mencionan la posibilidad de intercambio entre los distintos tipos celulares de las mismas

| glándulas, no hemos observado células con características intermedias entre mioepiteliales

| y secretoras. Consideramos que ambos tipos celulares provienen de líneas celulares

| distintas. Al respecto, los resultados obtenidos coinciden con los de CUTLER & CHAUDHRY

(1973) en glándulas submandibulares de rata, REDMAN et al. (1980) en glándulas parótidas

| de rata, Lórez et al. (1992a,b) en la glándula de Harder del hamster y Morimoro et al.

| (1994) en glándulas sudoríparas humanas. A diferencia de lo descripto en otras glándulas,

| Repman et al. (1980) y NaGAsHımA & Ono (1985), no encontramos células mioepiteliales

con citoplasma claro.

Con respecto al tercer tipo celular identificado, células con citoplasma de baja densidad

| electrónica, corresponderían a las observadas en otras glándulas (REDMAN et al., 1980;

| López et al.,1992a). La baja densidad electrónica se debería, principalmente, a la escasa

presencia de organoides. Algunos autores (TANDLER, 1963) consideran que dichas células

pueden ser precursoras involucradas en la renovación de células mioepiteliales. Sin

embargo para otros (REDMAN et al., 1980), la relación de estas células con las células

mioepiteliales dista de ser clara.

La presencia de vacuolas pinocíticas en las células mioepiteliales coincide con la

reportada en glándulas salivares (TakaHAsHI, 1958; SCOTT & PEAsE, 1959) y sudoriparas

(ELLis, 1965). Las interdigitaciones entre las células mioepiteliales y las células secretoras,

aquí observadas, aumentan el área de contacto entre dichas células, lo cual facilitaría el

| intercambio de metabolitos.

| Las terminaciones nerviosas con vesículas, observadas en aposición con las células

| mioepiteliales, concuerdan con las reportadas en diversas glándulas, como las submucosas

de la laringe humana (Pastor et al.,1994) y las sublinguales de rata (TEMPLETON & THULIN,

| 1978; NAGATO & TAnDLER, 1986). En relación con el contenido de las vacuolas, la

heterogeneidad del mismo sugiere la presencia de sustancias de secreción de diferente

| naturaleza química.

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Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 153-158, 5 de novembro de 2000

SINOPSE DO GÊNERO LISSONOSCHEMA (COLEOPTERA,

CERAMBYCIDAE, CERAMBYCINAE, TRACHYDERIND'

Marcela L. Monne

Miguel A. Monné

ABSTRACT

SYNOPSIS OF THE GENUS LISSONOSCHEMA (COLEOPTERA, CERAMBYCIDAE,

CERAMBYCINAE, TRACHYDERINI). The genus Lissonoschema Martins & Monné is redefined and L.

solangeae sp. nov. is described from Brazil (Mato Grosso). A key to the three species is added.

KEYWORDS. Cerambycidae, Cerambycinae, Lissonoschema, Taxonomy, Trachyderini.

INTRODUÇÃO

O gênero Lissonoschema, restrito à América do Sul, foi proposto por MARTINS &

Monne (1978) para duas espécies: Lissonoschema macrocolum Martins & Monné, 1978,

| do Espírito Santo (Brasil) e para Lissonotypus fasciatus Fisher, 1944, da Venezuela,

| transferida para Lissonoschema. Apresentamos a redescrição do gênero, chave de

| identificação para as espécies e a descrição de Lissonoschema solangeae sp. nov.,

| proveniente do Mato Grosso (Brasil).

| O material estudado pertence ao Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de

' Janeiro, Rio de Janeiro (MNRJ).

| 1. Contribuição nº 1174 do Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Paraná.

2. Departamento de Zoologia, Universidade Federal do Paraná; Caixa Postal 19020; CEP 81531-990 Curitiba, PR, Brasil. (Bolsista CAPES)

3. Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro; Quinta da Boa Vista; CEP 22940-040 Rio de Janeiro, RJ, Brasil. (Bolsista CNPq)

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 159-163, 5 de novembro de 2000

160 MonnE & MonnE

Lissonoschema Martins & Monne, 1978

Lissonoschema MARTINS & Monne, 1978:65, fig.1; FRAGOSO, MonNnÉ & SEABRA, 1987:200; Monne, 1994:105;

Monne & GiIESBERT, 1994:146; 1995:150.

Espécie-tipo: Lissonoschema macrocolum Martins & Monné, 1978 por designação

original.

Todo corpo com superficie lisa e brilhante. Cabega com raros pontos finos e rasos;

região posterior com estrias finas e transversais. Fronte profundamente escavada.

Tuberculos anteníferos aguçados no ápice. Vértice com depressão rasa. Submento .

densamente pontuado e com pêlos densos, curtos e eretos. Genas subtriangulares,

divergentes, com pontos finos, esparsos e rasos; tão longas quanto a metade do diâmetro

do lobo ocular inferior. Lobos superiores dos olhos com carena no lado interno. Mandíbulas

com 2/3 basais esparsa e grosseiramente pontuadas; ápices lisos e bífidos. Antenas com

evidente dimorfismo sexual; nos machos, filiformes ou subserreadas e com doze

antenômeros; nas fêmeas, serreadas e com onze antenômeros. Escapo (figs. 1,3,5, 7)

cilíndrico, curto, robusto e encurvado; pedicelo curto e transverso; antenômero III (figs.

1,5, 7) cerca de três vezes o comprimento do escapo, carenado e com projeção obtusa

nos ápices interno e externo; antenômeros HI-XII (XI nas fêmeas) com pilosidade curta e

densa, exceto o ápice interno liso e brilhante, superfície microesculturada e pontos finos

e densos. Nos machos, as antenas alcançam o ápice elitral nos antenômeros V ou VI; IV-

XI subiguais, antenômero XII (figs. 2, 6) variável. Nas fêmeas, alcançam o ápice elitral

no antenömero IX; IV-X decrescem gradualmente e XI (fig. 4) abruptamente estreitado

no 1/3 distal. Protórax tão longo quanto largo ou mais longo que largo; nos lados com ou

sem gibosidades. Margens anterior e posterior estreitadas. Pronoto convexo. Processo

prosternal cerca de 1/3 do diâmetro de uma procoxa; vertical no ápice. Cavidades cotilóides

anteriores abertas atrás. Mesosterno deprimido no meio. Processo mesosternal cerca de

2/3 do diâmetro de uma mesocoxa com a margem apical bilobada. Cavidades cotilóides

médias fechadas lateralmente. Metasterno convexo, cerca de 2/3 do comprimento do

prosterno. Mesepimero com pilosidade curta e esparsa. Escutelo cordiforme. Élitros cerca

de 2,0 a 2,5 vezes o comprimento do protórax, pouco mais largos que o protórax na base,

com os lados ligeiramente estreitados para os ápices. Superfície com raros pontos finos e

rasos. Região externa do friso sutural, ao lado do escutelo, profunda e longitudinalmente

deprimida. Extremidades elitrais arredondadas. Úmeros pouco proeminentes,

arredondados. Pernas anteriores e posteriores subiguais e 1/3 mais longas que as medianas.

Coxas arredondadas, com pontos finos e densos e pubescência densa e esbranquiçada.

Fêmures pedunculado-clavados; os posteriores apenas ultrapassam os ápices dos élitros;

meso- e metafêmures com espinho apical interno cerca da metade da largura do ápice do

fêmur, subiguais. Tíbias médias e posteriores carenadas no lado externo. Tarsos curtos,

primeiro metatarsômero mais curto que os dois seguintes reunidos; escovas tarsais

compactas. Urosternito II] uma vez e meia mais longo que o seguinte. Último urosternito |

com margem apical arredondada ou truncada.

Discussão. Martins & Monné (1978) consideraram Lissonoschema próximo à

Lissonotypus. Lissonoschema difere de Lissonotypus, principalmente por: fronte

profundamente escavada; lobos superiores dos olhos com carena no lado interno;

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 159-163, 5 de novembro de 2000

Sinopse do gênero Lissonoschema (Coleoptera, Cerambycidae... 161

| antenômero III carenado e cerca de 3 vezes o comprimento do escapo; protórax tão longo

| quanto largo ou mais longo que largo; extremidades elitrais arredondadas; pernas anteriores

e posteriores com comprimento subigual. Em Lissonotypus a fronte não apresenta

escavações, a guarnição interna dos lobos superiores dos olhos é pouco elevada, o

antenômero III é sulcado e cerca de 1,5 vezes o comprimento do escapo, o protórax é

mais largo que longo, as extremidades elitrais são subtruncadas ou angulosas na sutura e

as pernas anteriores com cerca de 2/3 do comprimento das posteriores.

Chave para as espécies de Lissonoschema.

Rh, Protórax e élitros castanho-escuros; élitros com faixa transversal mediana amarela;

mesepisterno liso; machos com último urosternito arredondado na margem apical.

WeneziclaR Strand. sen L. fasciatum (Fisher, 1944)

Protórax de outra cor; élitros pretos com a região circumescutelar vermelha;

mesepisterno com pontos densos, rasos e finos; machos com último urosternito

| inn CAdonamarsemiapicalBr esc eapoararesmao eso curaenpnon apena nero vastaaetancaeaaross 2

120. Cabega, escapo, pedicelo, protörax e aos lados dos Elitros, na metade anterior,

vermelhos; lados do protörax, na metade posterior, com gibosidades

proeminentes; antenömero XII, nos machos, (fig. 6) curto, achatado, expandido

nos 2/3 anteriores, no 1/3 distal estreitado, agugado e recurvo no äpice, cerca da

metade do III (figs. 5, 8) Brasil (Mato Grosso) .............. L. solangeae sp. nov.

Cabeça, escapo, pedicelo, protörax e lados dos élitros, pretos; lados do protörax

sem gibosidades; antenômero XII, nos machos, (fig. 2) longo, filiforme, estreitado

para o ápice e este recurvo, cerca de % do III (fig. 1). Brasil (Espírito Santo)..

Er RN L. macrocolum Martins & Monné, 1978

Lissonoschema solangeae sp. nov.

(Figs. 5, 6, 8)

Etimologia. Homenagem à Dra. Dilma Solange Napp, por sua valiosa contribuição

| ao conhecimento de Cerambycidae.

g. Cabeça, escapo, pedicelo, protórax, élitros, na região circumescutelar e nos lados,

da metade anterior e fêmures, vermelhos; antenômeros III-XII, élitros, tíbias e tarsos,

pretos; mesosterno, metasterno e abdome, castanho-avermelhados. Antenômeros III-XII

com pubescência curta, densa e preta; IV-XII achatados e subserreados; antenômero XII

| fig. 6) expandido nos 2/3 anteriores, no 1/3 distal estreitado e aguçado e recurvo no

ápice, cerca da metade do III (fig. 5) e subigual ao IV e X. Protórax (fig. 8) tão largo

| quanto longo com os lados, na metade posterior, com gibosidades proeminentes. Prosterno

sem pontuação sexual. Processo prosternal com pontos finos e rasos, adensados para o

ápice. Mesosterno e metepisterno lisos e glabros. Mesepisterno com densos pontos rasos

(e finos e pêlos curtos, densos e amarelados. Metasterno com pontos finos, rasos e esparsos

e pêlos curtos, esparsos e amarelados. Élitros (fig. 8) cerca de 2,0 vezes o comprimento

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 159-163, 5 de novembro de 2000

162 MonnéÉ & MonnÉ

Figs. L-/. Antenömeros basais e apicais: 1,2, Lissonoschema macrocolum Martins & Monne, holótipo O'; 3, 4,

parátipo, 9: 5, 6, L. solangeae sp. nov., holótipo S; 7, L. fasciatum (Fisher), S (ca=carena).

do protórax. Abdome com pilosidade amarelada, curta e decumbente em toda superfície.

Ultimo urosternito com a margem apical truncada.

Dimensões, mm, 4. Comprimento total 8,8; comprimento do protórax 2,5; maior

largura do protórax 2,4: comprimento do élitro 5,0; largura umeral 3,0.

Material-tipo. BRASIL, Mato Grosso: Sinop, holótipo S, X. 1976, Roppa & Alvarenga col. (MNRJ).

Discussão. Lissonoschema solangeae (fig. 8) difere de L. macrocolum, por: cabeça, |

escapo, pedicelo, protórax e no lados dos élitros, na metade anterior, vermelhos; lados do |

protórax, na metade posterior, com gibosidades proeminentes; antenômero XII, nos |

machos, curto, achatado, expandido nos 2/3 anteriores, no 1/3 distal estreitado, aguçado

e recurvo no ápice, cerca da metade do III; mesosterno liso e glabro. Em L. macrocolum |

a cabeça, o escapo, o pedicelo, o protórax e os lados dos élitros, são pretos, os lados do |

protórax sem gibosidades, o antenômero XII, nos machos, longo, filiforme, estreitado |

para o ápice e este recurvo e cerca de % do III e o mesosterno é densamente pontuado e |

ornado com pêlos curtos, densos e amarelados. L. fasciatum difere dessas espécies, além.

da coloração do corpo, pela pontuação sexual fina e adensada em duas pequenas áreas |

aos lados do prosterno.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 159-163, 5 de novembro de 2000

| Sinopse do gênero Lissonoschema (Coleoptera, Cerambycidae... 163

| Fig. 8. Lissonoschema solangeae, sp. nov., holótipo S, comprimento, 8,8 mm.

Agradecimentos. Ao Prof. Dr. Albino M. Sakakibara pela fotografia.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

| Fracoso, S. A.; MonnÉ, M. A. & SEABRA, C. A. C. 1987. Preliminary considerations on the higher

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Biol., Rio de Janeiro, 47(1-2):189-202.

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Monne, M. A. 1994. Catalogue of the Cerambycidae (Coleoptera) of the Western Hemisphere. Part XI.

São Paulo, Sociedade Brasileira de Entomologia. 157 p.

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| Western Hemisphere. California, Wolsfgarden Books. 409 p.

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California, Wolfsgarden Books. 419 p.

| Recebido em 15.10.1999; aceito em 21.12.1999.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 159-163, 5 de novembro de 2000

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DESCRIÇÃO DO GIRINO DE ODONTOPHRYNUS SALVATORI (ANURA,

LEPTODACTYLIDAE)

Reuber Albuquerque Brandão!

Cristiane Gomes Batista?

ABSTRACT

DESCRIPTION OF ODONTOPHRYNUS SALVATORI TADPOLE (ANURA, LEPTODACTYLIDAE).

The tadpole of Odontophrynus salvatori Caramaschi, 1996 is described from Chapada dos Veadeiros, State of

Goiás, Brazil. The tadpole resembles those of the genus Proceratophrys Miranda-Ribeiro, 1920, mostly by

depressive body in lateral view, small body size, and habitat use.

KEYWORDS. Anura, Leptodactylidae, Odontophrynus salvatori, tadpole, Proceratophrys.

INTRODUÇÃO

A tribo Odontophrynini, da subfamília Telmatobiinae, engloba atualmente os gêneros

Odontophrynus Reinhardt & Liitken, 1862 e Proceratophrys Miranda-Ribeiro, 1920,

que são bastante relacionados entre si (Peixoto & Cruz, 1980), e Macrogenioglottus

Carvalho, 1946 (LyncH, 1971). Embora o gênero monoespecifico Macrogenioglottus

esteja bem definido na tribo, duas espécies atualmente alocadas em Odontophrynus

apresentam algumas características comuns ao gênero Proceratophrys. Odontophrynus

moratoi Jim & Caramaschi, 1980 e O. salvatori Caramaschi, 1996 possuem nasais sem

contato com frontoparietais, ramo zigomático (embora alongado) sem sutura com o maxilar

| e frontoparietais não-exostosados, como as demais espécies desse gênero, mas apresentam

| tubérculos supranumerários nas superfícies tenares, superfície dorsal dos dedos e artelhos

| rugosa, ausência de glândulas paratóides e tibiais, de membranas interdigitais e de

calosidades nupciais, como as demais espécies do gênero Proceratophrys (Jim &

| CaraMascHI, 1980; CARAMASscHI, 1996). Ambas as espécies têm sido alocadas em um

| 1. Departamento de Ecologia, Universidade de Brasília, CEP 70910-900, Brasília, DF, Brasil (reuber@unb.br).

| 2. Laboratório de Fisiologia Animal, Departamento de Ciências Fisiológicas, Instituto de Biologia, Universidade de Brasília, CEP 70910-900,

Brasília, DF, Brasil (cbatista@unb.br).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 165-170, 5 de novembro de 2000

166 BRANDÃO & BATISTA

grupo distinto, pertencente a Odontophrynus (CaraMascHI, 1996). A atual alocação

genérica dessas espécies segue principalmente características osteológicas (LyncH, 1971)

que características de morfologia externa (SAVAGE & Cei, 1965). É necessário, portanto, o

estudo da morfologia dos girinos, da ecologia, da genética e da vocalização (Jim &

CARAMASCHI, 1980; CARAMASCHI, 1996; Rossa-FERES & Jim, 1996), além de marcadores

moleculares, para que seja possível definir satisfatoriamente o posicionamento taxonômico

dessas duas espécies.

Os girinos de Odontophrynus e Proceratophrys compartilham várias características,

como semelhanças nas estruturas bucais (fórmula dentária, formato e distribuição das

papilas), formato do focinho e do corpo em vista dorsal (Peixoto & Cruz, 1980; Rossa-

Feres & Jim, 1996). Os principais caracteres utilizados para diferenciar os girinos desses

gêneros são o formato do corpo em vista lateral (mais deprimido em Proceratophrys e

mais globular em Odontophrynus), a altura da nadadeira dorsal (mais baixa,

aproximadamente da altura do corpo, em Proceratophrys e mais alta em Odontophrynus),

o comprimento do corpo (menores em Proceratophrys e maiores em Odontophrynus), e

o tipo de hábitat (girinos de Proceratophrys ocorrem principalmente em riachos e girinos

de Odontophrynus ocorrem em poças) (RossA-FERES & Jim, 1996).

O girino de Odontophrynus moratoi, apresentado por Rossa-FERES & Jim (1996),

foi considerado mais próximo aos do gênero Proceratophrys, devido ao pequeno tamanho,

formato do corpo deprimido/globular e ocorrência em riachos. Nesse trabalho é descrito

o girino de O. salvatori, com base em exemplares coletados na localidade-tipo da espécie

(Chapada dos Veadeiros, Goiás) e discutida a importância de caracteres dos girinos na

alocação genérica destas espécies.

MATERIAL E MÉTODOS

Quatro girinos, no estágio 37 (GOSNER, 1960) foram coletados em um riacho temporário, cerca de 5 km

após a ponte sobre o rio dos Couros (aproximadamente 14°08°S, 47°32’W), na estrada que liga o município

de Alto Paraíso de Goiás à vila de São Jorge, Estado de Goiás, em 21 de abril de 1998, e estão depositados na

Coleção Antonio Sebben (AS-UnB lote 17), Departamento de Fisiologia Animal, Universidade de Brasília.

As características morfológicas utilizadas seguem ArriG & JoHNsTON (1986) e JonnsTON & ArriG (1986).

As comparações com girinos de Odontophrynus moratoi foram baseadas na descrição original (Rossa-FERES

& Jim, 1996) e em exemplares da Coleção Jorge Jim (JJ 6943 e JJ 6973), Departamento de Zoologia,

Universidade Estadual Paulista, Botucatu, SP, Brasil. As medidas tomadas dos girinos de O. salvatori foram:

comprimento total; altura, largura e comprimento do corpo; comprimento e altura da cauda; diâmetro do olho;

distâncias: olho-narina, interocular, internasal, olho-focinho; largura do disco oral. As medidas foram tomadas

com paquímetro digital (0,01 mm) e a identificação específica dos girinos foi feita a partir de jovens recém-

metamorfoseados obtidos no campo e em laboratório. Também foram analisados 10 girinos de Proceratophrys

goyana, coletados no rio São Miguel, Chapada dos Veadeiros, GO, em 19.V11.1998 por R. A. Brandão (AS-

UnB lote 22) e quatro de Odontophrynus cultripes coletados no córrego Mesquita, Município de Luziânia,

GO, em 03.1X.1996 por R. A. Brandão e A. Sebben (AS-UnB lote 8).

Odontophrynus salvatori Caramaschi, 1996

(Figs. 1-3)

Descrição. Um girino em estágio 37 (GosnER, 1960): corpo deprimido em vista

lateral (fig. 1) e elíptico, em vista dorsal (fig. 2). Focinho arredondado; olhos grandes,

dorsais e dirigidos lateralmente; narinas dorsais, reduzidas e redondas, com abertura na |

superfície do corpo; espiráculo sinistro, no terço médio do corpo, curto, sem margem

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 165-170, 5 de novembro de 2000

Descrição do girino de Odontophrynus salvatori (Anura, Leptodactylidae) 167

livre; espiráculo fundido ao corpo com abertura elíptica dirigida dorso-posteriormente;

tubo anal ventral dextro, fundido à cauda em toda sua extensão. Disco oral ântero-ventral,

com única fileira de papilas marginais, interrompida na porção superior (fig. 3). Papilas

largas, cônicas, arredondadas e bastante distintas. Fórmula dental 2(2)/3(1). A segunda

fileira anterior de dentículos córneos com interrupção mediana, onde caberiam 6 dentículos.

Primeira fileira posterior com interrupção onde caberiam 20 dentículos. Comprimento

da terceira fileira posterior aproximadamente dois terços da segunda fileira posterior.

Bico córneo intensamente pigmentado e finamente serrilhado. Peça superior levemente

convexa; peça inferior em forma de U. Altura da cauda aproximadamente igual à altura

do corpo (tab. I), com extremidade arredondada. Base da cauda larga, com musculatura

evidente. Altura da nadadeira dorsal aproximadamente o dobro da nadadeira ventral, a

qual é aproximadamente retilínea. A nadadeira dorsal estreita-se no terço final da cauda.

Tabela I. Medidas (em mm) dos girinos de Odontophrynus salvatori (n=4), coletados próximos ao rio dos

Couros, Município de Alto Paraíso de Goiás, em 21 de abril de 1998.

Medidas Média + Desvio Padrão Amplitude

Comprimento total 30,00 + 1,81 28,32 - 31,64

Altura do corpo 5,28 * 0,42 AO = 1.02

Largura do corpo 6,64 + 0,69 6,42 - 7,62

Comprimento do corpo Lo = 050 11,25 - 12,53

Comprimento da cauda 18,24 + 1,06 16,44 - 19,11

Altura da cauda 5,57 + 0,18 DIT = Doll

Diämetro do olho 1,84 + 0,11 PRO DR RO /

Distância entre narinas 0,24 + 0,02 0,27 - 0,22

Distância olho-focinho 0,37 + 0,03 0,41 - 0,33

Distância olho-narina 0,93 + 0,14 0,77 - 1,08

Distância interocular Di = 035 2,36 - 3,13

Largura do disco oral 2.64 = 0,22 2,31 - 2,91

Em vida, coloracäo castanha uniforme, mais escura dorsalmente e mais clara

ventralmente, sem manchas evidentes. Ventralmente, o intestino enovelado pode ser visto

por transparência. Cauda castanho-translúcida com manchas arredondadas marrom-escuras

nas nadadeiras dorsal, ventral e sobre o primeiro terço da musculatura. Fixado em formol,

corpo castanho-escuro e cauda castanho-amarelada com manchas negras, arredondadas.

Jovens recém-metamorfoseados, obtidos em laboratório, mediam 13,59+0,84 mm

(n=4) de comprimento rostro-cloacal e alguns exibiam fileiras de grânulos dorsais em

forma de ampulheta (n=2) e colorido castanho-acinzentado.

O girino de Odontophrynus salvatori distingue-se do girino de O. moratoi pela

coloração castanha uniforme do corpo, corpo mais elíptico em vista dorsal e deprimido

em vista lateral, menor interrupção da segunda fileira anterior de dentículos, narinas

reduzidas, além da distribuição geográfica distinta (Odontophrynus salvatori no Estado

de Goiás e O. moratoi no Estado de São Paulo).

História Natural. Adultos de Odontophrynus salvatori foram observados

vocalizando em área de cerrado sensu stricto (Erren, 1994) próximos à sede do Parque

Nacional da Chapada dos Veadeiros, GO, durante noites chuvosas entre outubro e

dezembro de 1996. Os indivíduos vocalizavam expostos, sobre litosolo. Os girinos foram

encontrados em um pequeno riacho temporário com dimensões máximas de 100 cm de

largura e 50 cm de profundidade, em cerrado sensu stricto com afloramentos de quartzito,

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 165-170, 5 de novembro de 2000

168 BRANDÃO & BATISTA

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Figs. 1-3. Girino de Odontophrynus salvatori no estágio 37: 1, vista lateral; 2, vista dorsal; 3, disco oral. Figs.

1, 2 na mesma escala.

próximo ao Parque. O riacho corria em local com cristas de afloramentos rochosos

alternados com bacias de deposição de areia quartzosa. Em porções mais rasas, formava

pequenas corredeiras sobre leito rochoso e nos locais mais profundos, onde os girinos |

foram encontrados, o leito era arenoso. Durante os meses de seca, o riacho desaparece,

restando apenas a calha de drenagem. Na data de coleta dos exemplares, o riacho |

apresentava sinais de início de dessecação. Também foram observados adultos de barata |

d'água (Belostoma sp.), potenciais predadores dos girinos.

Distribuição. Além da localidade-tipo (Parque Nacional da Chapada dos Veadeiros,

Municipio de Alto Paraíso de Goiás), Odontophrynus salvatori foi registrado também no |

Parque Estadual dos Pireneus (ca. 15º45ºS, 48°50’W), Municipio de Pirenópolis, GO |

(AS-UnB 1388, AS-UnB 1410) e no Distrito Federal, na Estação Ecológica do Jardim

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 165-170, 5 de novembro de 2000

Descrição do girino de Odontophrynus salvatori (Anura, Leptodactylidae) 169

Tabela II. Comprimento do corpo (estágio), fórmula dentária, forma do corpo (vista lateral) e hábitat dos

girinos conhecidos dos gêneros Odontophrynus e Proceratophrys. Fonte: 1, Rossa-FERES & Jim, 1996; 2,

presente trabalho; 3, ETEROVICK & SAaziMA, 1998. Proceratophrys precrenulata é apresentada aqui como P.

schirchi, seguindo CARAMASCHI & VELOSA (1997).

Espécies Comprimento do corpo Fórmula dentária Forma do corpo Habitat Fonte

O. achalensis 76 (28) 2(2)/3(1) 7 ? 1

O. americanus 75%) 2(2)/3(1) globular poga 1

O. barrioi 67 (38) 2(2)/3(1) globular poça 1

O. carvalhoi 49 (36) 2/3(1) globular poça 1

O. cultripes 40 (35) 2(2)/3 globular poga/riacho 1,2

O. lavillai 56(37) 2(2)/3(1) depr./glob. riacho/poga 1

O. occidentalis 58(37) 2(2)/3(1) globular poça 1

O. moratoi 32 (37) 2(2)/3(1) depr./glob. poça 1

O. salvatori 30 (37) 2(2)/3(1) deprimido riacho 2

P appendiculata 33 (36) 2/3(1) depr./glob. riacho 1

P. boiei 31 (34) 2(2)/3(1) depr./glob. riacho/poça 1

_P cururu 39,5 (38) 2(2)/3(1) depr./glob. riacho/poça 3

PP laticeps 31 (36) 2(2)/3(1) depr./glob. riacho 1

| P moehringi 24 (29) 2(2)/3(1) deprimido riacho 1

PB palustris 36 (37) 2(2)/3(1) globular riacho 1

_P schirchi 31 (34) 2(2)/3(1) depr./glob. riacho 1

P. goyana 40,2 (36) 2(2)/3(1) depr./glob. riacho/poga 2

Botânico de Brasília (ca. 15°55’S, 47°53’W) (AS-UnB 225), Estação Ecológica de Águas

Emendadas (ca. 15º30"S, 47°35’W) (AS-UnB 379-380) e APA do Cafuringa, Poço Azul

(ca. 15º35"S, 48°03’W) (AS-UnB 407-408; AS-UnB 1386-1387; AS-UnB 2099-2102).

Todas estas localidades estão acima de 900 metros de altitude.

Discussão. O girino de Odontophrynus salvatori, devido ao seu corpo deprimido,

pequeno tamanho e presença conhecida em riachos, se aproximaria mais dos girinos do

gênero Proceratophrys, concordando com as informações de Rossa-FERRES & Jim (1996)

para o girino de O. moratoi, sugerindo que essas duas espécies estariam mais próximas

do gênero Proceratophrys que do gênero Odontophrynus. No entanto, existem exceções

nestas caracterísitcas (tab. II, modificada de Rossa-FerEs & Jim, 1996). O girino de

Odontophrynus lavillai Cei, 1985 possui corpo deprimido/globuloso, como a maior parte

das espécies de Proceratophrys, e é encontrado em riachos e poças. Girinos de O. lavillai,

P. boiei (Wied-Neuwied, 1825), P cururu Eterovick & Sazima, 1998 e P goyana (Miranda-

' Ribeiro, 1937), se assemelham no formato do corpo e uso de habitat e o girino de P.

_ palustris Giaretta & Sazima, 1993 possui corpo globuloso. Em relação ao menor tamanho

“dos girinos de Proceratophrys quando comparados aos de Odontophrynus, observa-se

_ queosde? goyanae P cururu são semelhantes em tamanho aos de O. cultripes Reinhardt

| & Liitken, 1862. Adultos de O. cultripes vocalizando e girinos em diversos estágios já

_ foram observados em riachos no Distrito Federal (A. Sebben e R. A. Brandão, obs. pess.).

| Desta forma, os caracteres dos girinos utilizados para diferenciar os gêneros

' Proceratophrys e Odontophrynus são pouco conclusivos. Características morfológicas e

_ ecológicas (uso de hábitat) podem estar relacionadas a outros fatores além da filogenia

* destas espécies. É necessária a construção da filogenia dos gêneros Proceratophrys e

| Odontophrynus com base em parâmetros como vocalização, ecologia e biologia molecular,

- além dos caracteres diagnósticos (osteologia e morfologia), para ser estabelecida uma

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 165-170, 5 de novembro de 2000

170 BRANDÃO & BATISTA

satisfatória alocação genérica das espécies do grupo O. moratoi (O. moratoi e O. salvatori).

Agradecimentos. À Denise Rossa-Feres (Departamento de Zoologia, UNESP, São José do Rio Preto),

Guarino R. Colli (Departamento de Zoologia, Universidade de Brasília), José Peres Pombal Jr. (Museu Nacional,

Rio de Janeiro), Célio Haddad (Departamento de Zoologia, UNESP, Rio Claro) e Rogério Bastos (Universidade

Federal de Goiás, Goiânia) pela leitura crítica do manuscrito. A Simone Carolina e Franciane Jordão pela

confecção e montagem dos desenhos. Ao professor Antonio Sebben (Departamento de Ciências Fisiológicas,

Universidade de Brasília) pelas sugestões e informações sobre a história natural de Odontophrynus cultripes.

A Ulisses Caramaschi (Museu Nacional, Rio de Janeiro), pela verificação na identificação dos adultos de O.

salvatori coletados fora da localidade-tipo.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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Recebido em 08.03.1999; aceito em 23.12.1999.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 165-170, 5 de novembro de 2000

RITMO DE ALIMENTAÇÃO DE JUVENIS DE LORICARIICHTHYS ANUS

(SILURIFORMES, LORICARIIDAE) DA LAGOA DOS QUADROS, RS,

BRASIL

Ana Cristina Petry!

Uwe Horst Schulz!

ABSTRACT

FEEDING ACTIVITY OF JUVENILES OF LORICARIICHTHYS ANUS (SILURIFORMES,

LORICARIIDAE) IN THE QUADROS LAKE, RS, BRASIL. The rhythm of movements and feeding activity

of juveniles of Loricariichthys anus (Valenciennes, 1840) in the Quadros lake, South Brazil, are investigated.

Between October 1997 and August 1998, 236 specimens were captured during six bimonthly 24 hour gillnet

surveys. Significantly elevated levels of movement and feeding activity during the day are registered. The

patterns of movement and feeding activity displayed no significant difference, suggesting that high movement

“activity levels can be attributed to feeding activity. The mean of the intestinal quotient was 1,89, indicating

_ omnivorous feeding habits.

KEYWORDS. Loricariichthys anus, juvenile, feeding rhythm, intestinal quotient.

INTRODUÇÃO

As espécies de peixes podem diferir amplamente nos seus padrões diários de

“atividade alimentar. Entretanto, a causa principal dos padrões de atividade é muitas vezes

| difícil de ser estabelecida, sendo que os mesmos podem funcionar como resposta ao risco

| de predação e disponibilidade de alimento (METCALFE et al., 1999). A variabilidade da

| morfologia de órgãos como estômago, intestino, dentes e arcos branquiais reflete o

| desenvolvimento adaptativo do sistema digestivo aos hábitos alimentares (VERIGINA, 1990).

Dessa forma, o comprimento intestinal, nos peixes, pode funcionar como um indicador

‚da dieta (KRAMER & BRYANT, 1995).

| 1. Laboratório de Ecologia de Peixes, Centro de Ciências da Saúde, Universidade do Vale do Rio dos Sinos, UNISINOS, Caixa Postal 275, CEP

93022-010, São Leopoldo, RS, Brasil.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 171-176, 5 de novembro de 2000

172 PETRY & SCHULZ

Loricariichthys anus (Valenciennes, 1840), conhecida popularmente por cascudo-

viola, é uma das espécies mais numerosas da Lagoa dos Quadros, e, em função de sua

importância para a pesca local e boa aceitação no mercado, pode ser um potencial candidato

para a aguicultura. Entretanto, pouco é conhecido sobre a biologia da espécie.

Objetiva-se investigar os ritmos de movimentação e alimentação dos indivíduos

juvenis de L. anus da Lagoa dos Quadros, determinar a atividade nictemeral e estabelecer

o quociente intestinal da espécie, relacionando-o ao espectro alimentar.

MATERIAL E MÉTODOS

A Lagoa dos Quadros, situada no litoral norte do Rio Grande do Sul, 29°40° S, 50°06° W, é uma das |

maiores lagoas costeiras do Estado. Sua área é de 119 km?, com profundidade média de 4,22 m (SCHÄFER,

1992). Os ventos na região da lagoa causam, frequentemente, circulações diárias no corpo d'água, resultando

níveis altos de oxigenação e turbidez.

As coletas foram realizadas bimestralmente, no período de outubro de 1997 a agosto de 1998, próximo

à margem da lagoa, junto à estação de agüicultura da FEPAGRO (Fundação Estadual de Pesquisa Agropecuária),

no município de Terra de Areia, RS. O local da captura apresenta profundidade de 1,5 a 2 m, fundo arenoso e

presença de juncos. Os dados sobre a temperatura da água no período da captura foram registrados a cada

hora, através de leitura pelo registrador automático Minilog (VEMCO, Canadá).

Para a captura foram utilizadas duas redes de espera, malha 15 mm de entre-nós, 20 m de comprimento

e 1,5 m de altura. As coletas foram realizadas a cada 4 horas, num período total de 24h, sendo obtidas seis

amostragens a cada campanha. As revistas para o recolhimento dos peixes capturados levaram, em média, 10

minutos no final de cada intervalo de 4 horas.

A atividade de movimentação de L. anus foi estabelecida com base na frequência de indivíduos

capturados a cada 4 horas, relativa à captura total do período de 24 horas. Utilizou-se a frequência dos peixes

capturados e do peso seco do conteúdo intestinal relativa ao período de 24 horas, com a finalidade de equilibrar

os dados, em função das grandes variações no número de peixes capturados nas campanhas (n =18;n „=

98), bem como para possibilitar a comparação dos padrões apresentados pelos ritmos de movimentação e

alimentação dos indivíduos.

A atividade alimentar foi determinada pela avaliação do peso seco do conteúdo presente no tubo

digestivo, cuja desidratação foi efetuada em estufa a 45°C, até a estabilização do peso (BAGENAL, 1978). Os

valores do peso seco, nos diferentes períodos de captura, também foram transformados em valores relativos ao

peso registrado em cada campanha.

Efetuou-se o registro do comprimento total (cm; CT) e comprimento intestinal (cm; CI). O quociente

intestinal (QI) foi determinado através da razão do comprimento do intestino pelo comprimento total (BARBIERI

et al., 1994), por meio da expressão: Q!= CI / CT. A investigação do grau de maturidade gonadal (VAZZOLER,

1996) demonstrou que 93 % da amostra constituíram-se de indivíduos juvenis.

A análise estatística dos dados foi realizada através dos softwares SPSS, versão 8.0 e STATISTIX 1996,

versão 1.0. A existência de correlação entre o número de indivíduos capturados e a temperatura da água, assim

como entre o CT e o CI, foi testada pela correlação linear de PEARSON. No teste da normalidade da distribuição

do CT aplicou-se o Wilk-Shapiro Rankit Plot. Para investigar se os níveis de atividade de movimentação e |

alimentação diferem durante o dia (8-20h) e a noite (20-8h), adotou-se o teste Multinominal, comparando os |

valores esperados com aqueles observados, com um nível de significância p < 0,05. A hipótese zero testada foi:

os níveis de movimentação e alimentação são iguais durante o dia e a noite resultando, desta forma, em valores |

esperados de 50 % para cada turno. Na comparação dos padrões apresentados pelos ritmos de movimentação e |

alimentação, em suas respectivas frequências mínimas e máximas, utilizou-se as funções do teste Kolmogorov-

Smirnov, com um nível de significância p < 0,05. Uma parte da captura foi depositada na coleção de referência |

do Museu de Zoologia, Universidade do Vale do Rio dos Sinos, São Leopoldo (UNISINOS).

RESULTADOS

Durante o período de amostragem foram capturados 236 indivíduos. O número |

de exemplares nas capturas variou de 18 (outubro) a 98 (dezembro), demonstrando uma |

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 171-176, 20 de outubro de 20005 de novembro de 2000

Ritmo de alimentação de juvenis de Loricariichthys anus... 173

tendência de aumento durante o verão (fig. 1). Contudo, a correlação entre o número de

peixes capturados e a temperatura da água não foi significativa (r = 0,55; p = 0,3). A

distribuição das classes de comprimento dos peixes capturados seguiu um padrão normal,

com um comprimento médio de 19,9 cm (+ 3,5).

Conforme evidenciam as variações ao longo de 24h, 66% dos indivíduos foram

capturados durante o dia e 34% durante a noite (fig. 2). O teste Multinominal demonstrou

diferença significativa na comparação dos valores esperados com os valores observados

(x? = 10,24; p = 0,001). A maior atividade de movimentação ocorreu entre 12e I6he a

menor atividade entre 24 e 4h. O padrão de atividade alimentar seguiu o mesmo ritmo,

demonstrando diferença significativa entre os períodos do dia e noite (fig. 3). Encontrou-

se 62 % do peso seco total no intervalo do dia e 38 % no intervalo da noite (x? = 5,76; p

= 0,016). A maior atividade ocorreu entre 12 e 16h, e a menor entre 24 e 4h. O teste

Kolmogorov-Smirnov não detectou diferenças significativas na distribuição entre o ritmo

de movimentação (fig. 2) e o padrão do ritmo de alimentação (fig. 3).

O comprimento do intestino variou entre 14,3 e 68,2 cm, com uma média de

37,6 em (+9,7). Verificou-se uma correlação linear significativa entre o comprimento

total do peixe e do intestino (r = 0,76; p<0,0001). O quociente intestinal médio foi 1,9

(+0,33) e sua distribuição seguiu um padrão normal.

DISCUSSÃO

Os Siluriformes, em geral, apresentam um ritmo de atividade noturno, como Silurus

glanis (Linnaeus, 1758), o maior peixe de água doce europeu (WHEELER, 1983; Boujard

& Luquet, 1996 apud Baras et al., 1999). Para os Siluriformes da América do Sul, os

padrões de atividade alimentar têm sido estabelecidos somente para algumas espécies

(PEREIRA et al., 1982: SABINO & CAsTRo, 1990; Buck & Sazima, 1995; CASATTI & CASTRO,

1998). O ritmo de atividade noturno é exibido por Rhamdia sp. do lago de Valência,

Venezuela (PEREIRA et al., 1982), Rhamdella minuta (Luetken, 1875) do Rio Indaiá, São

Paulo (SaBino & Castro, 1990) e Hoplosternum littorale (Hancock, 1828) em lagoas da

planície de inundação do Alto Rio Paraná, Brasil (Hann et al., 1997). Entretanto, esse

comportamento não foi observado nos indivíduos juvenis de L. anus da Lagoa dos Quadros.

O ritmo diurno desses animais poderia estar relacionado com a alta turbidez da água da

lagoa, uma vez que esta reduz a eficiência dos potenciais predadores do L. anus, que

buscam alimento por meio de orientação visual. A mudança no comportamento de

predadores de orientação visual foi descrita por NETTLES et al. (1987) para Salmo trutta

(Linnaeus, 1758), que evitou áreas de alta turbidez do Lago Ontário e por Crow (1989)

para Micropterus salmoides (Lacepede, 1802), que alterou suas táticas de forrageio em

relação à visibilidade da presa.

| Investigando a atividade de loricarídeos de um riacho brasileiro, Buck & SAZIMA

(1995) encontraram padrões diferenciados de atividade para indivíduos adultos e juvenis

de Harttia kronei (Miranda-Ribeiro, 1908) e Kronichthys heylandi (Boulanger, 1900).

Essas diferenças no ritmo de atividade alimentar foram descritas para Harttia sp. e

‚Hypostosmus garmani (Regan, 1904) nas cabeceiras do Rio São Francisco (CasarTI &

Castro, 1998). Apesar de não haver explicação aparente para o comportamento

diferenciado, Buck & Sazima (1995) consideram possível que o ritmo diurno de atividade

dos juvenis de H. kronei possa ser um componente do comportamento anti-predatório.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 171-176, 5 de novembro de 2000

174 Perry & SCHULZ

Power (1984) relatou a influência da predação na atividade e distribuição de loricarídeos

em riachos no Panamá. Esse autor considerou fraca a variação do ritmo diurno e noturno

dos animais, relacionando-a com o comportamento das aves piscívoras e mamíferos no

Río Frijoles, que por sua vez, apresentam hábitos diurnos e noturnos. Entretanto, os peixes

evitaram as áreas rasas, onde são mais suscetíveis aos predadores, preferindo as partes

mais profundas para sua alimentação.

A relação entre a fregiiência de peixes capturados nos diferentes horários representa

uma medida da sua mobilidade. Dessa forma, foi verificada a existência de uma relação

entre a mobilidade e a atividade alimentar, a partir da variação dos valores médios das

capturas e do peso seco do conteúdo intestinal dos indivíduos amostrados. Anras et al. |

(1998) constataram o mesmo para Coregonus clupeaformis (Lacepede, 1803),

Salmoniformes, em um experimento no Canadá, onde o nível máximo de movimentação

ocorria no período de alimentação dos peixes.

A ocorrência de adaptações do organismo ao regime alimentar, na estrutura e

comprimento do conduto gastrointestinal, pode refletir-se no alongamento do tubo digestivo

no regime vegetariano, encurtamento no carnívoro e nos tamanhos intermediários pelo

omnivoro (GurcEL et al., 1991). BARBIERI et al. (1994) estabeleceram relações entre o

comprimento do intestino e o dos indivíduos para espécies de peixes, associando-as com o

hábito alimentar investigado em outros trabalhos. Esses autores consideram o quociente

intestinal uma medida diagnóstica que corrobora a determinação do regime alimentar dos

peixes. Entretanto, para KRAMER & BRYANT (1995), as variações do quociente intestinal de

peixes em diferentes categorias tróficas são, fregüentemente, amplas e sobrepostas.

Analisando o espectro alimentar de três espécies do Rio Paraná, Fugir & HAHN

(1991) estabeleceram relações com a morfologia do aparelho digestivo, fazendo uso do

comprimento padrão para fins de cálculo do índice intestinal. O valor médio do índice

intestinal de Loricariichthys platymetopon (Issbrücker & Nijssen, 1979) foi de 1,9 (+

0,21), menor em relação ao de Prochilodus scrofa (Steindachner, 1882) e Curimata

insculpta (Fernando-Yepez, 1948), consideradas iliófagas. Em função da maior proporção

de detrito em seu espectro alimentar, L. platymetopon foi caracterizada como detritívora.

O valor do QI médio de L. anus é maior do que 1,17, QI determinado para o

carnívoro Arius luniscutis (Cuvier & Valenciennes, 1840) (GurceL et al., 1991) e menor

do que 4,66, QI de Metynnis cf. rooseveltii (Eigenmann, 1915), considerado herbívoro |

(GurcEL et al., 1991). Valores de QI intermediários foram encontrados em outros

omnivoros estudados por SABINO & Castro (1990) como Phalloceros caudimaculatus

(Hensel, 1868), Deuterodon iguape (Eigenmann, 1907) eGeophagus brasiliensis (Quoy

& Gaimard, 1824) que apresentaram, respectivamente QI de 1,78, 1,11, e 1,45.

A análise da dieta de 334 espécimens de L. anus da Lagoa dos Quadros detectou a

presença de material vegetal, larvas de insetos aquáticos, com predominância de

zooplâncton (Márcia F. Schneider, com. pessoal). A comparação do QI determinado para

L. anus com aquele investigado por outros autores, para espécies que exibem hábitos

alimentares carnívoro, herbívoro e omnívoro, bem como as informações sobre a origem

do alimento utilizado relacionam a espécie investigada ao hábito alimentar omnívoro.

Agradecimentos. Ao coordenador do projeto “Corredor Ecológico Integrado do Litoral Norte”, pelo |

auxílio financeiro obtido; à FEPAGRO, por ceder as instalações da Estação de Aquicultura de Terra de Areia,

para a realização das coletas; e ao CNPq, pela bolsa de Iniciação Científica concedida ao primeiro autor.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 171-176, 20 de outubro de 20005 de novembro de 2000

Ritmo de alimentação de juvenis de Loricariichthys anus... 175

IN]

Out-97 Dez-97 Fev-98 Abr-98 Jun-98 Ago-98

Data coleta

| alas

É 2

| 10

8-12 12-16 16-20 20-24 24-4 4-8

Horário [h]

‚ Figs 1-3. Loricariichthys anus capturados de outubro de 1997 a agosto de 1998, na Lagoa dos Quadros, RS:

1, fregüencia absoluta de indivíduos; 2-3, variação da fregiiência média relativa das capturas (2) e do peso

seco do conteúdo intestinal (3) em relação ao período de 24 horas (os traços verticais representam o desvio-

padrão, as setas indicam os horários de maior e menor atividade de movimentação e alimentação e as barras

horizontais indicam o período da noite).

| Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 171-176, 5 de novembro de 2000

176 PETRY & SCHULZ

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Recebido em 14.05.1999; aceito em 27.12.1999.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 171-176, 20 de outubro de 20005 de novembro de 2000

BEHAVIOR AT A NEST OFAMAZILIA LACTEA (AVES, TROCHILIDAE)

Yoshika Oniki!

Alexsander Z. Antunes!

Edwin O. Willis !

ABSTRACT

The hummingbird Amazilia lactea (Lesson, 1832) built a nest in São Paulo, Brazil, in the spring (Oct)

and added lichens during incubation. The female incubated over 70 per cent of the day, 1-56 min per visit,

and brooded two small young somewhat less; brooding stopped by about 10 days of age, as did night brooding.

Lack of night brooding for large young hummingbirds may reflect lack of space in a small nest. Young stayed

in the nest 19 days. Feedings were widely spaced, and presence of possible predators caused alarm.

KEYWORDS. Amazilia lactea, nest, behavior, Brazil.

INTRODUCTION

| The Sapphire-spangled Emerald Amazilia lactea (Lesson, 1832), Trochilidae is a

small hummingbird, some 9-10 cm long (4.27+0.43 g, range 3.5-5.2, n=59) that frequents

gardens and yards at edges of towns and low to high levels of forest edges and second

growth, from Venezuela to southeast Brazil. It favors such bright red flowers as the

exotic Malvaviscus arboreus Cavanilles (Malvaceae), used as decoration of yards or as

natural fences, but visits many other species (pers. obs.).

| IHerING (1900) reported a cup nest of A. lacta, 4 cm tall and wide, internal diameter

2 cm; plant down with bits of “bark” outside, egg 13.5 x 8 mm. NIETHAMMER (1953)

photographed a nest 2 min a papaya shrub, September, with 2 small young holding on to

the nest lining (eggshells still present); internal diameter 2.5 cm, depth 2 cm; 40 min

between feedings, the female hovering backward to leave with a triple note. RuscHi

(1949, 1982) also reports nests. Here we report on behavior at a nest on the campus of

the Universidade Estadual Paulista, Rio Claro, São Paulo, Brazil and, also report on

other nests.

1. Departamento de Zoologia, Universidade Estadual Paulista, Caixa Postal 199, CEP 13506-900 Rio Claro, SP, Brazil.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 177-182, 5 de novembro de 2000

178 ONIKI; ANTUNES & WILLIS

MATERIAL AND METHODS

The campus of the Universidade Estadual Paulista (UNESP) (620 m elevation, 22º 23º S, 47º 33º W),

with many buildings, has scattered trees and bushes. Observations at the nest started on 17 Oct 1993 for a

total of 125 h 24 min, ending on 26 Nov 1993, when the nest was collected and deposited in the Museu de

Ciências da Natureza, UNESP, Rio Claro. We observed for only 10 min each on 4, 10, 19, 22, 23, 24 and 25

Nov; 35 min on 26 Nov but on 24, 29, 30, 31 Oct, 1, 2, 5, 6, 7, 13, 14, 15, 17, 20, 21 Nov, we observed an

average of 494.14 min/day (range 105-732 min/day).

We studied the nest with binoculars 9 x 23 and 8 x 40 from a distance of 8-10 m, without blind.

Usually one person was observing, at times two or three. Sketches of female and young in the nest (figs. 1-14)

were made in the field. Plants were identified by A. Z. Antunes (UNESP).

RESULTS AND DISCUSSION

Nest Building and Incubation. The nest was on a vine (Ficus pumila L., Moraceae)

2.35 m up under a horizontal concrete bar of the Instituto de Biociências building, next to

an interior sidewalk. On 17 Oct, the nest under construction was a shallow cup without

lichens. Two days later (19 Oct), there were some whitish-green lichens on the outer

walls. After two more days (21 Oct, 17 h 58 min),the female was first seen sitting on the

nest, facing NW. Two white eggs were later present (29 Oct). The collected nest was 3.5

cm across by 2.5 cm high outside, 3.3 across by 1.6 cm deep inside. In Amazilia fimbriata

(Gmelin, 1788) eggs are laid two days apart, and nest building continues during incubation

(HAVERSCHMIDT, 1952).

The cup nest looked pale because of the inner down and the whitish green lichens

outside, unlike a nest of Chlorostilbon aureoventris (Orbigny & Lafresnaye, 1838) on the

same campus (OnIkI & ANTUNES, 1998), which was made of light colored down but had |

outer walls covered with thin brown bark strips. We found few bark strips on the outer |

walls of the A. lactea nest, unlike IHERING (1900).

The female incubated 71.2 % of the day (24 Oct), with brief visits and absences (7

h 40 min-8 h) when she pecked at lichens on the nest edge or added new ones as if |

building. At 8 h, after putting a piece of lichen on the outer wall (figs. 1, 2), she moved

the body sideways and sat low with bill almost horizontal when it started to rain (figs. 3,

4). Even later in the day, she often brought new lichens. Five days later (29 Oct), she

occasionally brought a lichen on return, or billed the nest edge as she sat, protruding the

tongue 1 to 7 times. At 10 h 22 min she brought white plant down and added it to the |

bottom of the nest (as 3 times as on 31 Oct).

On 24 Oct, the female seemed to ignore cars or motorcycles 15 m off; occasionally

she left when a bicyclist, person or cat passed near the nest. She left the nest to attack a

Molothrus bonariensis (Gmelin, 1789) female on the ground, diving past it 3 times (9 h |

45 min, 29 Oct). Seven days later, she flew from the nest on 3 occasions when a cat or

cats passed. She mostly ignored A. lactea, Eupetomena macroura (Gmelin, 1788) and |

Chlorostilbon aureoventris in flowers or trees in the area. Once she attacked Troglodytes

aedon Vieillot, 1807 on her return (1 Nov, 9 h 57 min), and twice fled the nest when

Pitangus sulphuratus (L., 1766) came to a guava tree (Psidium guajava L., Myrtaceae).

She also fled the next day (2 Nov); later (13 h), she watched it but stayed on the nest.

At times, she hovered below the nest and examined the under side of the concrete

bar looking for insects. Once, she snapped up a large ant from the vine with a sharp

“tchup!” call, then flew to the nest and settled. She could stretch her right wing and settle

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 177-182, 5 de novembro de 2000

Behavior at a nest of Amazilia lactea (Aves, Trochilidae) 179

Figs. 1-14. Amazilia lactea: 1, 2, female tucking lichen on the outer wall of nest; 3, 4, incubating female

sitting low during rain; 5, female alert, just before leaving nest; 6, female points bill up as she looks at

something above; 7, incubating female looks down at vine; 8, female stretches neck a bit, then more, before

hovering to get tiny insect in between leaves above, then back to nest; 9, preening and sunning, with tail

spread; 10, large young with body a bit raised, fluttering wings; 11, female sitting on nest rim above young,

“and moving head left and right; 12, after female leaves, small young remain low in nest; 13, young with head

“and body raised, looks after female when she flies from nest rim; 14, young with head and body raised when

female arrives.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 177-182, 5 de novembro de 2000

180 ONIKI; ANTUNES & WILLIS

pointing the bill up as if looking at something above her (fig. 6) or downward (fig. 7).

Several times, the incubating female watched passing insects or even pecked or left to

hover and eat one (fig. 8). She sometimes ejected feces, preened (fig. 9), scratched her

head with her foot over the wing, stretched the wings, or turned on the nest.

The longest periods on the nest were 50-56 min (5 cases), 4 being midday on the

30th and the other midday on the 29th. There were 6 cases of 41- 49 min, 9 of 31-39, 16

of 21-28, 32 of 11-20, 42 of 3-10 and 48 of 2 min or less, these often being during

building activity. Periods off the nest were seldom over 15 min (7 cases, one being 32

min at 15 h 32 min on Oct 31); 11-15 min were 15 cases; 6-10 min were 48; 5 min in 19 :

cases; 3-4 in 12 cases; 0.5-2 in 60 cases, mostly when bringing material. She was on the '

nest 61.5 to 80.2% of the day (31 Oct, 1 Nov) for a total of 72.3 % of 56 h 10 min '

watched. During the day, she was on the nest slightly less 6-8 h and 16-18 h than at

midday (fig. 15).

The female seldom called while leaving and arriving at the nest during incubation

but, after feeding young was noticed for the first time (5 Nov, 8 h 56 min), she usually

arrived and left the nest with “tri-i-i or longer calls. The incubating female champed the

bill 3 times, protruded the tongue several times, and looked about a lot, just before leaving

the nest (11 h 11 min, 24 Oct, fig. 5). Often she would fly east and return from the east,

but could fly north and return from the east or northwest.

Away from the nest, she sometimes preened, visited flowers, or pecked insects from

foliage or bricks. Once she came back to a often used perch in a “sibipiruna” (Caesalpinea |

peltophoroides Benth., Leguminoseae) across the road (16 h 26 min, 31 Oct), preenedona |

dry horizontal branch 0.3 cm diameter and 3.5 m up: she preened the right wing, then the

breast after a pause; her body feathers were fluffed. Two minutes later she raised the right

wing and preened under it from behind, turning the head; she then preened the left wing,

shook both wings as she opened the tail widely, and closed it again. She was partly in the

sun. She preened the breast again, then both sides of the breast.

Frequent scratching while sitting (also in A. fimbriata, after HavERSCHMIDT, 1952)

may be due to blood-feeding mites (Acari) which may interfere with development of |

young, as reported by Arves (1997) in Riparia riparia (L., 1758) nestlings. Sheltered

nests in buildings often present mites during nesting, as in Chlorostilbon aureoventris,

Eupetomena macroura (Trochilidae), Zonotrichia capensis (Emberizidae), and

Notiochelidon cyanoleuca (Vieillot,1817) (Hirundinidae) (Oniki, pers. obs.).

Nestlings. The first young hatched 5 Nov and, the second by the next day. The first

young left between 16 h 30 min on 23 Nov and 8 h 57 min on 24 Nov; one day later (6h

52 min, 25 Nov) both had left the nest. Thus, young stayed in the nest 19 days.

RuscHt (1949, 1982) mentioned 23 days as the time young stay in the nest, without |

noting what nest was studied. GRANTSAU (1988) also reported 23 days, perhaps following

Ruschi. Other records by Ruschi have been strongly criticized (VanzoLint, 1999).

HAVERSCHMIDT (1952) noted 20 days for the related A. fimbriata. Further studies may be

necessary to determine if nestling periods ever exceed 20 days in these species.

The female brooded tiny young regularly (5-7 Nov), but only once six days later (3

min stay on 13 Nov) and not thereafter. However, the longest brooding periods (5-7 Nov)

were only 22-30 min (9 cases), 11-20 min (26 cases) and 3-10 min (36) being common;

several visits of 2 min (10) and 1 (5, including 2 cases when she only fed, on the 7th) were

recorded. Intervals off the nest (5-7 Nov) were much as during incubation, 3 cases of 22-

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 177-182, 5 de novembro de 2000

Behavior at a nest of Amazilia lactea (Aves, Trochilidae) 181

30 min, 13 cases of 11-16, 38 cases of 3-10, 8 cases of 1-2 and 21 of brief intervals.

Percent of the time brooding was about normal (70.9 %) with one young (5 Nov morning),

dropped to 60.4 % (6-7 Nov), and was 0.06 % later (13 Nov). She was on the nest more

6-10 h than later in the day (fig. 15), perhaps because the air was less warm earlier. Late

in nesting, she was not on the nest in the evenings (17 Nov on), though she went on the

nest for the night when young were small (6 and 7 Nov). Lack of night brooding later, a

common behavior in hummingbirds, may reflect small nest size and lack of space for the

female to sit.

Fifty-three visits (13-21 Nov) were 16-91 min apart (X = 40.7); records of 76, 79

and 91 min were about 13 h on 3 days, while one of 16 min was early 20 November.

Feedings were 1 or 2 per hour watched, being 1.7 per hour 10-12 h and dropping to 1.1

per hour 14-16 h, then rising (fig.15).

She occasionally flew to hover and peck an insect off leaves or vines before returning

to the nest, but often got insects and returned to brood without feeding young. At times,

she visited nearby flowers of Agapanthus cf. africanus L. (Liliaceae), Hemerocallis sp.

(Liliaceae) or Petrea volubilisL., Clerodendron cf. thomsonae Balfour (both Verbenaceae)

before returning to feed the young; in these cases she transferred nectar to young. Often

she preened, spread her tail, or stretched, on favorite perches in shrubs not far from the

nest, as if not pressed for time or food.

When cats were nearby (early 21 Nov), the female stayed away over 63 min,

chattering “chi-i-1,” from a frequently-used perch in a nearby guava tree, finally preening

and sunning a bit. She later attacked a Molothrus bonariensis female nearby investigating

a Zonotrichia capensis (Müller, 1776) possible nest. On other days, she had attacked a

Zonotrichia and a Thraupis sayaca (L., 1766) near the nest; occasionally disputes with

passing Amazilia lactea were noted, but not with other hummingbirds. She fled when a

person or cat passed on other days.

She fed the young after sitting on the nest edge (fig. 11), never while hovering. She

usually looked about briefly and fed both young, at times returning one or more times to

feed the first young, pumping the bill down into each young gape. Early in the nestling

period, she ate small fecal sacs from the bottom of the nest and settled, after feeding.

With only one young (5 Nov), she occasionally interrupted brooding, rose, and poked the

bill down into the nest; on several visits (that day and 6-7 Nov) she did not feed, just sat

on the nest. She could stretch the wings or

defecate as she sat, or turn.

3 Ba) When 11-12 days old (17 Nov) young

q o-><80 4 5 ;

É A “Soo oem a 3 had their eyes open and pinfeathers had

E 0 — . .

5 Gear : E started to open on wings. Nestlings 15-16

E = = daysold (20 Nov) were seen ejecting feces

E 40 097 SFR 21/11) a 5 2 %

E NE = _ m 2 forthefirsttime, and leaves around the nest

5 > i 3 were spotted with black dots. On this date,

5 oneyoung was exercising the wings, rising

2 up slightly above the nest rim (fig. 10).

6-7 B-9 10-11 12-13

14-15 16-17 18

Young 15-16 days old (21 Nov) were

Hour of Day = 5 . E

exercising the wings, moving constantly in

Fig. 15. Amazilia lactea brooding at different hours

with eggs or young, and feedings per hour.

the nest; the base of the bill was pinkish,

but the tip blackish. When the female was

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 177-182, 5 de novembro de 2000

182 ONIKI; ANTUNES & WILLIS

absent, young sat so low that only tips of head and bill were visible (fig. 12); they were

higher on the nest when the female was flying around visiting nearby Clerodendron sp.

flowers, when she flew from the nest rim (fig. 13), or when she arrived (fig. 14). Exercising

or sitting up mainly when the female is present to keep the lookout may avoid predation.

Young of this nest were not infested by Diptera botflies (Philornis sp.), unlike nestlings

of Chlorostilbon aureoventris and Eupetomena macroura.

Ants wandering on nearby vines may have been attracted to the nest by feces,

especially after young started to defecate outside, soiling nearby leaves. It could be that

ants had to be removed by the female because of danger to the nestlings.

We tried to raise well-feathered motherless young at home (2 separate young of |

Eupetomena macroura and a nest with 2 young of Chlorostilbon aureoventris) and they |

fed on insects and sugar water but remained immobile and did not exercise the wings.

Eupetomena young became flat-chested with lack of exercise, protein or muscle |

development (Oniki, pers. obs.). Perhaps young hummingbirds need the presence of the |

female to feel secure enough to preen actively or exercise wings, as we found also in

Lipaugus lanioides (Lesson, 1844) (Cotinginae) (WiLLis & Onıkı, 1998).

Other Nests. E. Willis found one bird sitting on a nest at 5.5 m in the Horto Florestal

of Rio Claro on 23 Feb 1984; other single birds were carrying cat-tail down there on 18 |

April 1994 and building 3 m up at Fazenda Santa Genebra, Campinas on 8 Aug 1976. He |

also found one incubating 4 m up on a vine, 5 Nov 1976, at Fazenda Barreiro Rico in |

Anhembi. Apparently the species nests much of the year.

Acknowledgments. To Conselho Nacional de Desenvolvimento Tecnológico e Científico (CNPg) |

and the Universidade Estadual Paulista (UNESP) for support. Publication nº. 12 of the Instituto de Estudos da

Natureza, Rio Claro.

REFERENCES

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41(1):1-37.

Wıruıs, E. O. & Onıkı, Y. 1998. One-parent nesting in Cinnamon-vented Pihas (Lipaugus lanioides,

Cotinginae, Tyrannidae). Ornitologia Neotrop., Montreal, 9:129-159.

Recebido em 29.11.1999; aceito em 10.03.2000.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89): 177-182, 5 de novembro de 2000

NUEVA ESPECIE DE CEPHALOBIUM (RHABDITIDA, DIPLOGASTERIDAE)

PARASITO DE NINFAS DEGRYLLODES LAPLATAE (ORTHOPTERA,

GRYLLIDAE) EN LA ARGENTINA

Nora B. Camino!

Guillermo R. Reboredo!

ABSTRACT

NEW SPECIES OF CEPHALOBIUM (RHABDITIDA, DIPLOGASTERIDAE) PARASITE OF

NYMPHS OF GRYLLODES LAPLATAE (ORTHOPTERA, GRYLLIDAE) IN ARGENTINA. Cephalobium

bidentatum sp. nov., parasitizing nymphs of Gryllodes laplatae Sauss (Orthoptera, Gryllidae) from Argentina,

ıs described and illustrated. It is distinguished from other members of the genus Cephalobium Cobb, 1920, by

having the buccal cavity very sclerotized with two hook-shaped teeth, vagina short and muscular, male has

two spicules with hook-shaped tips, and by the distribution pattern of the postanal papillae: one pair under the

anus, three pairs between the anus and the tail, and two pairs at the base of the tail appendage.

KEYWORDS. Nematoda, Cephalobium bidentatum, Gryllidae, Parasite, Taxonomy.

INTRODUCCIÓN

El género Cephalobium fue establecido por Cogg (1920) describiendo a la especie

Cephalobium microbivorum. Posteriormente, ARTIGAS (1929) describió C. nitidum. BASIR

(1956) transfirió a Oxyuris socialis de Ley (1850) al género Leidynemella Chitwood &

Chitwood, 1933. Subsecuentemente, Travassos & KLoss (1957) colocaron O. socialis

en el género Cephalobium, y consideraron que las especies C. microbivorum y C. nitidum

son indistinguibles entre sí; en 1960, confirman a C. socialis de EE.UU. como la única

especie del género. Rao & Rao (1964) reconocieron a la especie tipo del género, C.

microbivorum y no aC. socialis (Leidy, 1850), asimismo describieron a una nueva especie

denominándola C. microvata. En Argentina, REBOREDO & Camino (1998) hallan otra

especie C. magdalensis en grillos. A continuaciön describiremos una nueva especie de

Cephalobium parásita también de grillos, de la Argentina.

1. Centro de Estudios Parasitológicos y de Vectores, CEPAVE, calle 2, 584, 1900 La Plata, Argentina.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 183-186, 5 de novembro de 2000

184 CAMINO & REBOREDO

MATERIALES Y METODOS

Ninfas de Gryllodes laplatae Sauss (n=9) fueron colectadas manualmente y acondicionadas para su

procesamiento. En el laboratorio se usaron las técnicas de Pomar (1975), que consistieron en colocar a las

ninfas a 5ºC durante aproximadamente 3 minutos, para luego ser disectadas, bajo microscopio estreoscópico,

en cápsulas de Petri con agua destilada. Los nemátodos (machos y hembras) se extrajeron del estomodeo

intestinal y fueron muertos en agua destilada a bafio María durante 2 minutos. Posteriormente fueron colocados

por 48 horas en una solución de partes iguales de TAF (formol 40% 7 ml, trietanolamina 2 ml y agua destilada

91 ml) y agua destilada, para luego terminar la fijación en TAF puro. Las medidas corresponden al holotipo

macho y alotipo hembra, entre paréntesis se proporciona el intervalo de las medidas de los paratipos.

Cephalobium bidentatum sp. nov.

(Figs. 1-8)

Descripción. Nemátodos filiformes, con cutícula finamente estriada. Cavidad bucal

en ambos sexos fuertemente esclerotizada presentando un par de dientes con forma de

gancho (fig. 6). Un par de anfidios pequefios y piriformes (fig. 6). Esófago largo, con un

pseudobulbo valvado y bulbo basal simple y sin valvas (figs. 1, 2). El poro excretor se

encuentra a nivel del pseudobulbo. Hembra didélfica, vulva ubicada en la porción mediana

del cuerpo, vagina corta y muy musculosa (fig. 8). Huevos grandes con cáscara lisa.

Macho con dos espículas iguales, levemente curvadas y las punteras con forma de gancho,

gubernáculo pequefio y ancho (figs. 5, 7). Sin bursa. Seis pares de papilas genitales

masculinas todas postanales, dispuestas de la siguiente manera: 1 par debajo del ano, 2

pares alejados del anterior, 1 par separado de los anteriores y 2 pares cercanos a la base

del apéndice caudal (fig. 3). Apéndice caudal para ambos sexos largo y filiforme (fig. 4).

Diagnosis. Cephalobium bidentatum sp. nov. se caracteriza por presentar la cavidad

bucal muy esclerotizada con dos fuertes dientes en forma de gancho, la vagina es corta y

musculosa, macho con dos espículas de puntera curvada, y por la distribución de las

papilas genitales postanales: un par debajo del ano, tres pares situados entre el ano y la

base del apéndice caudal, y dos pares en la base del apéndice caudal.

Macho (n = 22). Longitud total del cuerpo: 2350 um (2050-2625); diámetro cefälico

a nivel de las papilas: 8,5 um (7,05-9,4); longitud del estoma: 20,7 um (18,8-21,15);

distancia del extremo anterior al pseudobulbo: 284,3 um (272,6-296,1), al bulbo basal:

179,2 um (176,25-188); diámetro máximo a nivel medio del cuerpo: 80,5 um (72,85-

86,95); longitud de las espículas: 63,3 um (61,1-65,8); longitud del gubernáculo: 24,95

um (23,5-25,85); longitud del apéndice caudal: 38,7 um (37,5-39,95).

Hembra (n = 26). Longitud total del cuerpo: 3025 um (2950-3150); diámetro cefálico

anivel de las papilas: 11,32 um (9,4-14,1); longitud del estoma: 20,25 um (16,45-25,85);

distancia del extremo anterior al pseudobulbo: 216,23 um (206,8-230,3), al bulbo basal: |

320,35 um (310,23-340,75); diámetro máximo a nivel medio del cuerpo: 112,45 um

(110,20-115,40); V: 41% (37,62-43,80); longitud de la vagina: 23,35 um (21,15-25,85);

largo y ancho de los huevos: 67,35 um (63,45-70,55) x 38,2 um (37,6-39,9); longitud

del apéndice caudal: 32,25 um (25,85-37,6).

Hospedador tipo. Ninfas de Gryllodes laplatae Sauss (Orthoptera, Gryllidae).

Localidad tipo. City Bell, Buenos Aires, Argentina. Campo destinado a horticultura

intensiva.

Material tipo. Depositado en la colección Helmintológica del CEPAVE, serie 224-

226. Holotipo 224, Alotipo 225 y Paratipos (21 4, 259) 226, Reboredo col.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 183-186, 5 de novembro de 2000

Nueva espécie de Cephalobium (Rhabditida, ... 185

Cito

rea

yuaa,

Figs. 1-8. Cephalobium bidentata sp. nov.: 1, cabeza de la hembra, vista ventral; 2, cabeza del macho, vista

ventral; 3, extremo posterior del macho, vista ventral; 4, extremo posterior de la hembra, vista lateral; 5,

extremo posterior del macho vista lateral; 6, estoma de la hembra; 7, una espícula y gubernáculo; 8, vagina y

üteros con huevos (Barras, 0,050 mm, figs. 1-5, 8; 0,25 mm, figs. 6,7).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 183-186, 5 de novembro de 2000

186 Camino & REBOREDO

Discusión. Cephalobium bidentatum sp. nov. comparte con C. microbivorum y C.

microvata y C. magdalensis la ausencia en el macho de las papilas genitales preanales,

dos espículas, el gubernáculo corto y ancho, vagina corta y musculosa, y la presencia de

pocos huevos de cáscara lisa. C. microbivorum se aleja por la cavidad bucal que es

cilíndrica y fuertemente quitinizada, con una parte bulbiforme en cuyo interior hay un

órgano triturador que sustituye a las valvas que normalmente se encuentran en el bulbo |

basal, el poro excretor se encuentra en la base del esófago cercano a la extremidad del |

ovario anterior y por poseer diferente distribución de las papilas genitales postanales: |

una papila grande central, luego dos pares, un par separado de las anteriores y una serie |

de papilas menores distribuidas irregularmente y localizadas entre las papilas mayores. |

C. microvata se diferencia por la cavidad bucal que esta dividida en dos porciones, sin la -

presencia de dientes y poco quitinizada, las espículas poseen punteras simples y aguzadas |

y tiene cinco pares de papilas genitales postanales situadas lateralmente y ubicadas a

igual distancia unas de otras, excepto el tercer par que está muy cercano al cuarto. C. |

magdalensis se separa por poseer en la cavidad bucal tres dientes en forma de gancho, las |

dos espículas son más cortas (57,55 um), 6 pares de papilas genitales postanales dispuestas |

un par debajo del ano, tres pares alejados del par anterior y agrupados, separados existen

dos pares juntos y un par en la base del apéndice caudal.

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

ARTIGAS, P. 1929. Uma nova espécie de nematoideo do gênero Cephalobium Cobb, 1920. Bol. Biol., São

Paulo, 4:81-84.

Basir, M.A. 1956. Oxyuroid parasite of arthropoda. Zoologica, Stuttgart, 38:79.

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REBOREDO, G.R. & CAMINO, N.B. 1998. Two species of nematodes (Rhabditida: Diplogasteridae and

Rhabditidae) parasites of Gryllodes laplatae (Orthoptera: Gryllidae) in Argentina. Mems Inst. Oswaldo

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TRAVAssos, L. & KLoss, G.R. 1957. Cephalobium socialis (Leidy, 1850) comb. n. Anais Acad. bras. Cienc.,

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— . 1960. Compêndio dos nematoides parasitos intestinais de artröpodos. Arqs. Mus. nac. Rio de J., Rio de

Janeiro, 50:237-303.

Recebido em 05.10.1999; aceito em 17.03.2000.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 183-186, 5 de novembro de 2000

ASPECTOS DA BIOLOGIA REPRODUTIVA DE BOTHROPS JARARACA EM

CATIVEIRO (SERPENTES, VIPERIDAE)

Maria Lúcia Machado Alves !

Moema Leitão de Araujo !

Andre Alberto Witt !2

ABSTRACT

REPRODUCTIVE BIOLOGICAL ASPECTS OF BOTHROPS JARARACA IN CAPTIVITY

(SERPENTES, VIPERIDAE). The reproduction of Bothrops jararaca (Wied, 1824) in captivity in ordened to

determine the intercourse period, births, number of neonates, proportion of males and females per litter were

performed between 1989 and 1999. Fifty eight females were observed, 16 intercourses in captivity, 45 females

arrived already fertilized from nature and 53 litters, resulting on the birth of 426 live neonates, 67 infertile egg

masses, 18 stillborn neonates and 4 abnormal neonates. The intercourse period was from february to december

and the births happened between february and may. From the two gestacional periods observed, the shortest

one was 152 days and the longest 239. The average amount of live neonates per litter was 8,04. Among 323

neonates, 47,68% were males and 52,32% were females. During the first year of life, 75,71% of the females

and 71,54% of the males died, and 2,31% of the females and 0,81% of the males reached the fifth year of life.

KEYWORDS. Bothrops jararaca, reproductive cycle, neonates, development, captivity.

INTRODUÇÃO

No Estado do Rio Grande do Sul, Brasil, Bothrops jararaca (Wied, 1824) é

encontrada principalmente nos municípios de Nova Petrópolis, Sapiranga, Anta Gorda,

Picada Café, Salvador do Sul, Canela, Veranópolis e Nova Prata (Encosta Inferior do

Nordeste), São Francisco de Paula, Bom Jesus (Campos de Cima da Serra), Sarandi,

Tucunduva (Alto Uruguai), Terra de Areia (Litoral) e Viamão (Depressão Central). É

uma serpente vivípara, de hábitos terrestres, semi-arborícola, de atividade basicamente

noturna, encontrada principalmente em matas e margens de matas. Alimenta-se

preferencialmente de pequenos roedores e aves.

Sobre a biologia reprodutiva, nascimento e desenvolvimento de Bothrops Wagler,

1824 constam relatos de diversos autores, como LeLour (1973) para Bothrops moojeni

Hoge,1966; LEITÄO-DE-ARAUJO & PERAZZOLO (1974), LEITAO-DE-ARAUJO & MATSCHULAT-

1. Núcleo Regional de Ofiologia de Porto Alegre, Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul; Caixa Postal 1188;

CEP 90001-970 Porto Alegre, RS, Brasil.

2. Bolsista FAPERGS (Proc. Nº 97/51068.3).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 187-192, 5 de novembro de 2000

188 ALVES, L-DE-ARAUIO & WITT

Ery (1980), MurrHy & MrrcHELL (1984) e PEzzano (1986) para B. alternatus D.,B. &D.,

1854; HoGE & FEDERsonI (1976/77) e FEDERsonI (1978/79) para B. atrox (L., 1758);

MELGARE)JO (1977) paraB. neuwiedi pubescens (Cope, 1870); MurPHy & MitcHerr (1984),

Aıves et al. (1998) e LEITAO-DE-ARAUIO et al. (1998) para B. neuwiedi.

Especificamente para B. jararaca, VanzoLINI (1946) citou o período de gestação

no verão (entre novembro e abril) e a eclosão dos filhotes na meia estação e princípio do

inverno (entre maio e agosto). Sazima (1988) estudou a biologia comportamental de 71

indivíduos (47 fêmeas e 24 machos), com uso de marcas naturais, em área de campo em

Campinas, São Paulo. Sazima (1989) relatou o comportamento alimentar em encontros

provocados na natureza na Mata de Santa Genebra, Campinas, São Paulo. Breno et al.

(1990) descreveram o nascimento e o desenvolvimento de filhotes por um período de

quatro anos, citando dados sobre mortalidade, primeira ecdise, medidas e percentual

entre os sexos. JANEIRO-CINQUINI et al. (1993a), através do estudo do ciclo ovariano de

111 fêmeas, constataram que a vitelogênese ocorre entre o outono e o inverno e a ovulação,

provavelmente no início da primavera, enquanto fêmeas prenhes foram observadas de

novembro a março. JANEIRO-CINQUINI et al. (1993b), no estudo do peso e comprimento

dos testículos e no peso da gordura abdominal de 250 exemplares, concluíram pela

existência de um ciclo reprodutivo anual, influenciado pelas estações do ano. Também

constataram a presença de espermatozóides móveis nos ductos deferentes de todos os

espécimes observados, independente da estação do ano e sugerem que a gordura acumulada

no inverno seja utilizada na primavera e verão, quando ocorreria a reprodução.

Objetiva-se descrever o comportamento de corte e cópula, período gestacional,

ciclo reprodutivo, épocas de nascimento, médias de peso e comprimento entre machos e

fêmeas, sobrevida, maturidade sexual e índices de mortalidade em B. jararaca.

MATERIAL E MÉTODOS

Foram observadas 58 fêmeas de B. jararaca, provenientes de 14 municípios de cinco das onze regiões

fisiogeográficas do Estado do Rio Grande do Sul, Brasil e 53 ninhadas, no período de 1989 a 1999, resultando

no nascimento de 426 neonatos, todos integrados ao acervo vivo do Núcleo Regional de Ofiologia de Porto

Alegre (NOPA), Museu de Ciências Naturais (MCN), Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul (FZB). Os

exemplares mortos durante o período foram incorporados à coleção do MCN.

Os procedimentos de criação e manutenção, incluindo alimentação, biometria, pesagem, sexagem,

temperatura e acondicionamento foram efetuados conforme Aves et al. (1998) e LerrÃo-DE-ARAUJO et al. (1998).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Corte, cópula e período gestacional. Das 58 fêmeas observadas, 45 chegaram prenhes |

da natureza, 13 copularam em cativeiro e, dentre as primeiras, uma copulou mais duas

vezes e outra mais uma vez em cativeiro, totalizando 16 cópulas observadas.

O comportamento de corte e cópula seguiu os padrões descritos para B. neuwiedi |

(Aves et al.,1998), sempre com a iniciativa do macho, começando por movimentos

laterais da cabeça sobre o dorso da fêmea, passando a agitar repetidamente a cauda,

induzindo-a à aceitação, para então realizar a cópula. Este procedimento muitas vezes

era interrompido antes que o macho conseguisse a penetração do hemipênis, sendo

reiniciado em várias oportunidades em dias subsequentes. O maior tempo de duração de

cópula observada foi de 9 horas consecutivas, assemelhando-se aos dados de LELOUP |

(1973) para B. moojeni, de 7 a 8 horas de cópula. Diverge dos períodos de cópula

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 187-192, 5 de novembro de 2000

Aspectos da biologia reprodutiva de Bothrops jararaca... 189

observados, de 2h 30min para B. alternatus por PEzzano (1986) e de 17 a 20 horas para

B. atrox, segundo Wilson Fernandes ( com. pess.). As cópulas de B. jararaca foram

verificadas nos meses de fevereiro, maio, junho, agosto, outubro, novembro e dezembro,

sendo mais frequentes em outubro. Este amplo período não foi observado para B. neuwiedi,

que apresenta época de cópula restrita aos meses de abril a julho (ALvEs et al., 1998) e B.

moojeni, de setembro a fevereiro (LELour, 1973). O maior número de cópulas ocorreu em

outubro, em plena primavera e os nascimentos entre fevereiro e maio, verão e outono,

definindo um ciclo reprodutivo que começaria na primavera e culminaria no outono,

vindo de encontro ao observado por VanzoLint (1946), que citou o encontro de fêmeas

ovadas de B. jararaca em novembro, concluindo que a gestação ocorre no verão; por

SAZIMA (1988), que encontrou na natureza fêmeas grávidas a partir de outubro, até março,

por Breno et al. (1990) que receberam fêmeas prenhes nos meses de novembro e janeiro

e JANEIRO-CinQuint et al. (1993a, b), que referiram o período reprodutivo de B. jararaca

como sazonal, ocorrendo uma vez por ano, pela observação de ovos e embriões durante

os períodos quentes e úmidos (de novembro a fevereiro).

Um macho nascido em 07.03.1996 e uma fêmea em 03.03.1997 foram mantidos

em uma mesma caixa viveiro, a partir de abril de 1998. Em 13.10.1998 foram encontrados

copulando, quando a fêmea estava com 1 ano e 7 meses, pesando 120 g e aproximadamente

70 cm e o macho 2 anos e 7 meses, pesando 140 g e aproximadamente 80 cm de

comprimento. A partir de então, foram observados e registrados os dados da fêmea, que

aumentou até julho de 1999 cerca de 130 g e 17,1 cm; todavia, no período de fevereiro

“a maio de 1999, época de observação dos nascimentos, a mesma não pariu, tendo sido

“isolada para observação. A não fecundação dos óvulos, nesse caso, pode indicar a

“imaturidade sexual do casal, mais especificamente da fêmea, ou, associado à constatação

de cópulas em épocas diversas, indicar a possibilidade de ter ocorrido armazenamento de

| esperma nas espermatecas, conforme SAINT GIRONS (1966) e LELouP (1973). FEDERSONI

(1978/79) citou para B. atrox o amadurecimento sexual dos machos aos 2 anos e seis

meses, relacionando com a mudança da coloração da ponta da cauda e Breno et al.

(1990) supõem a idade de 3 anos para a maturidade sexual em B. jararaca.

| O período gestacional, pela observação de duas fêmeas de B. jararaca que copularam

em cativeiro, foi de 152 e 239 dias, aproximando-se das médias constatadas para B.

| alternatus (PEZZANo, 1986), de 173 dias e de B. moojeni, com média de 225 dias (LELOUP,

1973). O ganho médio de peso, desde a cópula até o parto, foi de 240 g (73%) e 80 g

(15%), respectivamente e a perda média, tomada no último mês de gestação e logo após

|O parto nas demais fêmeas que pariram, foi de 142,22 g (33,3%).

As fêmeas que pariram realizaram ecdises e se alimentaram até um mês antes do

| parto, não apresentando divergências com o comportamento de outras fêmeas, não prenhes,

| assim como quanto ao observado em B. neuwiedi por ALvEs et al. (1998).

| Nascimento. As 53 ninhadas nasceram entre 12 de fevereiro e 31 de maio, sendo

| 33 em março. Apesar de não ser possível determinar um período restrito para a ocorrência

“de cöpulas, os nascimentos aconteceram uma vez ao ano, definindo para B. jararaca um

ciclo reprodutivo anual, como citado para B. moojeni (LeLour, 1973), B. alternatus

“(Pezzano, 1986), B. neuwiedi (Aves et al., 1998) e B. atrox (Wilson Fernandes com.

| pess.). Tal período aproxima-se mais aos citados para B. alternatus, março e abril (LeITÃo-

| DE-ARAUJO & PERAZZOLO, 1974), B. atrox, janeiro, fevereiro e março por Wilson Fernandes

| (com. pess.), B. neuwiedi, fevereiro e abril (MurPHY & MrrcHELL, 1984) e janeiro a maio

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 187-192, 5 de novembro de 2000

190 ALVES, L-DE-ARAUJO & WITT

(ArvEs et al., 1998) e B. neuwiedi pubescens, em abril ( MELGAREIO, 1977).

Das 58 fêmeas observadas, 53 pariram, resultando em 426 (82,60%) filhotes vivos,

67 (13,12%) ovos atrésicos, 18 (3,5%) natimortos e 4 (0,78%) anômalos. Não houve

diferença entre as fêmeas vindas prenhes da natureza e aquelas que copularam em cativeiro,

quanto à média de filhotes vivos, que foi de 8,04, sendo mais próxima daquelas citadas,

de 6,66 para B. alternatus (MurpHy & MrrcHELL, 1984) e de 6,8 para B. neuwiedi (LEITÄo-

DE-ARAUJO et al., 1998). Houve maior número de natimortos entre as fêmeas vindas prenhes

da natureza e de anômalos entre as que copularam em cativeiro.

Dos 323 filhotes sexados, 47,68% eram machos e 52,32% fêmeas; deixaram de |

ser sexados 103 exemplares, devido à ocorrência de canibalismo e mortes ocorridas em |

finais de semana, com consegüente decomposição. Um maior número de fêmeas também .

foi constatado por BRrENo et al. (1990), porém os dados percentuais diferem, pois citam

24% de machos e 76% de fêmeas em 128 exemplares. Discordam totalmente para os

índices de 65,6% de machos e 34,4% de fêmeas em 497 exemplares sexados de B. neuwiedi |

(LerrÃo-DE- ARAUJO et al., 1998) e de 33 exemplares de B. atrox, com 66,66% de machos

e 33,30% de fêmeas (HoGE & FEDERSONI, 1976/77).

Coloração da cauda e ecdises. Os filhotes de B. jararaca, ao nascer, apresentam a ponta |

da cauda de coloração clara, esbranquiçada ou amarelada, numa extensão de 1,5cm, que

permanece até aproximadamente um ano de vida, quando passam a ter a mesma coloração do

resto do corpo. Estes dados convergem com aqueles de Breno et al. (1990), para B. jararaca

e com os citados para B. neuwiedi pubescens por MELGAREIO (1977) e B. neuwiedi por

LEITAO-DE-ARAUIO et al. (1998). Discordam com os dados de HocE & FEpersont (1976/77) |

para B. atrox, em que a ponta da cauda é branca nos machos e preta nas fêmeas, até dois anos.

A observação da ocorrência de ecdise logo ao nascer e até 48 horas de vida, |

também foi citada por Breno et al. (1990) em filhotes de B. jararaca. A partir de então, |

as ecdises ocorreram em períodos bimestrais, até dois anos e após trimestrais, |

assemelhando-se a B. neuwiedi, segundo LerrÃo-DE- ARAÚJO et al. (1998). Divergem dos

dados de FeDERSONI (1978/79), que observou ecdises no 11º dia nos machos e no 12º dia

nas fêmeas de B. atrox e de Pezzano (1986), que menciona a ocorrência da primeira

ecdise para B. alternatus, até o 12º dia de vida.

Dados biométricos. Ao nascer, os neonatos foram pesados e medidos, constatando- |

se média de 10,14 g e 28,69 cm para machos e 9,85 ge 28,4 cm para fêmeas. A proporção

média da cauda em relação à cabeça e ao tronco foi de 6,01 para os machos e 6,44 para |

as fêmeas, dado este não significativo em termos de dimorfismo sexual.

As fêmeas ingeriram maior volume de alimento e apresentaram acréscimos maiores

de peso e comprimento em relação aos machos, no primeiro ano de vida. Dos 12 aos 18

meses, houve inversão desta relação, quando os machos apresentaram maiores valores na |

ingestão de alimento, peso e comprimento. Dos 18 aos 24 meses, constatou-se nova

inversão, sendo maiores os valores nas fêmeas, assim permanecendo até atingirem 42 |

meses de vida ( figs. 1, 2).

As médias iniciais de peso e comprimento constatadas para B. jararaca aproximam- |

se daquelas citadas para B. atrox (HoGE & FeDERSONI 1976/77), de 8,0 ge 28,5 cm para

machos e 8,15 ge 28,55 cm para fêmeas; para B. moojeni (LELour, 1973), de 10 g e 30

cm; para B. neuwiedi (MurpHy & MrrcHEL, 1984), de 9,6 g e 26,4 cm, (LEITAO-DE-ARAUJO

et al., 1998), de 10,5 ge 26,6 cm para fêmeas e 10,75 g e 26,1 cm para machos e com os

dados de VAnzoLInI (1946), que citou 30 cm e de Breno et al. (1990) que constataram

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 187-192, 5 de novembro de 2000

Aspectos da biologia reprodutiva de Bothrops jararaca... 191

=> ITS CM E SS SAE

T R 35 ==

Da her niene Comprimento F

30 +

Comprimento M

5 15 +

[2]

10 +

meses meses

“Figs.1,2. Ganho de peso e crescimento em Bothrops jararaca (Wied, 1824) nos primeiros 42 meses de vida

em cativeiro (F= fêmea; M = macho).

11,7ge31,91cm paraB. jararaca. Diferem daqueles de B. alternatus, com médias de

17,45 ge 31,6 cm (LerrÃo-DE-ARAÚJO & PERAZZOLO, 1974), com crescimento médio de

97,56 ge 21 cm no primeiro ano de vida (LEITÃO-DE-ARAUJO & MATSCHULAT-ELY, 1980),

“de 26,3 ge 33,6 cm (Murray & MrrcHeLL ,1984) e de 15 g e 20 cm (PEzzano, 1986). A

diferença em relação a B. alternatus está diretamente relacionada com o maior porte

desta espécie em relação às demais comparadas.

O desenvolvimento de B. jararaca em cativeiro apresentou divergências no ganho

de peso e comprimento dos filhotes, quando comparados com os dados de BRENO et al.

(1990) para a mesma espécie. No primeiro ano de vida apresentaram acréscimos médios

‚de 33,57 g e 24,96 cm, no segundo 43,4 g e 11,76 cm e no terceiro 25,78 ge 6,45 cm,

enquanto os citados autores constataram 7,42 g e 8,16 cm, no primeiro, 36,58 g e 25,07

‚cm no segundo e 27,81 ge 12 cm no terceiro ano de vida. Estas diferenças podem estar

relacionadas à quantidade de alimento ingerido nos mesmos períodos, pois, enquanto os

mantidos no NOPA chegaram a ingerir 20g de alimento aos doze meses e 60g ao atingirem

24 meses, a cada alimentação quinzenal, os mesmos autores citam doses quinzenais de 2

neonatos de camundongos (+ 5 g) no primeiro ano, um neonato de rato (+ 6 g) no segundo

ano e um camundongo de 8 g a cada vinte dias no terceiro e quarto anos.

Tabela I. Número de óbitos de Bothrops jararaca (Wied,1824), por sexo, ocorridos nos primeiros seis anos de

‚vida em cativeiro

Sobrevida

em meses Fêmeas % Machos %

0-12 106 Tai! 88 71,54

12 - 24 6 4,28 8 6,50

24 - 36 5 3,57 7 5,69

36 - 48 5 3,57 6 4,87

48 - 60 3 2,14 1 0,81

60 - 72 | 0,71 - -

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 187-192, 5 de novembro de 2000

192 ALVES, L-DE-ARAUJO & WITT

Sobrevida. O maior número de óbitos ocorreu nos primeiros 12 meses de vida

quando houve, principalmente, rejeição do alimento oferecido, mesmo com insistência

pela indução através de pinça ou a manutenção da presa junto ao exemplar por até 24

horas. HoGE & FEDERSONI (1976/77), BRENO et al. (1990) e LerrÃo-DE-ARAUJO et al. (1998)

também atribuíram a abstinência de alimento, neste período, como a principal causa da

mortalidade, registrada para B. atrox, B. jararaca e B. neuwiedi, respectivamente.

A partir do segundo até o sexto ano de vida, houve redução proporcional no percentual

de óbitos (tab. I), sendo que das 140 fêmeas e 123 machos estudados, mantêm-se vivos 14

fêmeas (10,02%) e 13 machos (10,59%), não tendo sido computados as 29 fêmeas e 31

machos nascidos no verão de 1999, por não terem completado um ano de vida.

Agradecimentos. Ao Laboratório Regional de Apoio Animal (LARA) do Ministério da Agricultura, |

pelo fornecimento de camundongos e aos demais bolsistas, estagiários e funcionários do NOPA/MCN/EZB,

pelo auxílio na criação e manutenção dos exemplares.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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Recebido em 19.08.1999; aceito em 05.04.2000.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 187-192, 5 de novembro de 2000

COMPARATIVE STUDY OF WAX GLANDS IN FOUR MELIPONINI BEES

(HYMENOPTERA, APIDAE) PRODUCING DIFFERENT QUANTITIES OF WAX

Vagner Melo Cavalcante !

Vagner Tadeu Paes de Oliveira !

Carminda da Cruz-Landim!

ABSTRACT

The developmental degree of the wax glands was compared in four Meliponini bees, that produce

different quantities of wax. The histological data and height average of the wax epithelium during the time in

which the maximum production of wax is expected, are in accordance with the rates of wax produced by the

species. In Lestrimelitta limao (Smith, 1863) a species which has cleptobiotic habits, and frequently rob wax

from the attacked colonies, the height of wax epithelium was the lowest among the studied species. The cells

seem to show an abnormal vacuolated cytoplasm, in the phase in which they would be producing wax.

KEYWORDS. Stingless bees, wax glands, development, wax production.

INTRODUCTION

The eusocial bees of Apidae family build their nests with wax, to which they add

different kinds of exogenous materials (HEPBURN & KURSTIENS, 1988). In Apis mellifera

L., Apini, the wax is produced by epithelial abdominal glands (SNoDGRAss, 1956),

constituted by cells of class [of Norror & QUENNEDEY (1974), which are located ventrally

from the third to sixth sternites (DrEeyLING, 1903). In meliponines the glands are also

present from the third to the sixth abdominal segments but, dorsally, in the tergites (DRORY,

1873; Cruz-LANDIM, 1967). In both classes of bees the wax glands have a developmental

and functional dynamics that are related to worker division of labor in the colony (RóscH,

1927, 1930; SNoDGRass, 1956). In newly emerged workers the region where the wax

glands will developed, appear as an ordinary epidermis, but a few days after the adult

* emergency the epidermal cells turn columnar and active in wax production. Later, in old

“aged forager workers, the cells height decrease and the region become a simple and flat

layer of epidermal epithelium again.

1. Instituto de Biociências, Universidade Estadual Paulista, UNESP, Av. 24 A, 1515, Bela Vista, CEP 13506-900, Rio Claro, SP, Brazil

(cclandim @rc.unesp.br).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 193-198, 5 de novembro de 2000

194 CAVALCANTE; OLIVEIRA & CRUZ-LANDIM

In Apis mellifera the wax glands are active approximately between 6 and 18 days of

adult life (RóscH, 1930). Both meliponines and A. mellifera produce wax at approximately

the same age, which coincide with the phase when workers are nursing (HEBLinG et al.,

1964). The amount of wax used in the nest construction and the type of material added to

it, vary from one species to another, according to the habits (MiBorrow et al.,1987) and

in the same species according to the nest location and the environmental resources.

The aim was to search for morphological and developmental differences in the wax

glands, related to wax production in four species of Meliponini, according to their habits

or behavioral characteristics, which interfere in wax production.

MATERIAL AND METHODS

The species used in this study were Trigona recursa Smith, 1863, T. hypogea Silvestri, 1902,

Cephalotrigona capitata (Smith, 1854) and Lestrimelitta limao (Smith, 1863). The workers were middle

aged, which could be observed by the evaluation of the tegument color due to the esclerotization of the

tegument. Some abdomens were separated from the body and fixed in Bouin fixative, embedded in histero-

resin, and sectioned. The sections 6um thicks were stained with hematoxilin and eosin, for histological study.

Other abdomens were dehydrated, dried at critical point dryer for analysis under scanning electron microscope

(SEM). Vaucher specimens are depositated in the collection of the Centro de Estudos de Insetos Sociais, and

the histological slides and SEM samples in the Departamento de Biologia both of Instituto de Biociências de

Rio Claro, Universidade Estadual Paulista, Rio Claro, SP, Brazil.

The height of the epithelium was measured in the glands of five workers of each species. Ten

measurements were made in the tergites chosen of each bee, the average height of the epithelium was calculated

for each species.

RESULTS AND DISCUSSION

The wax glands has the maximum development when the workers are working inside

ofthe colony, mainly in the brood area, building and provisioning brood cells. These taskes

are done, in most of the known species of Meliponini, by workers between 5 and 20 days

of adult life (Kerr & Santos Neto, 1956; HEBLınG et al., 1964; GrANINNI, 1997).

The epidermis of the region of the wax gland appeared developed in all middle

aged workers of the species studied (figs. 1-4) although with different degrees among

them. Some histological differences were, also, detected. In Lestrimelitta limao, a |

cleptobiotic bee, that apparently uses stoled wax for nest construction, the basal surface

of the cell, in contact with hemolymph, appeared vacuolated and bulging into the cavity

of the body (fig. 2). In this species the cells are cubical and the average height of the

epithelium is 4um. In Trigona hypogea, a necrophagous bee, that usually use mainly

resin to build its semi-subterraneous nest, the glandular epithelium has an average height |

of 8um and columnar cells. Some of the cells also have basal protuberances toward the

hemolymph (fig. 3). Trigona recursa and Cephalotrigona capitata have wax glands with

usual morphological features. These species build theirs nest in tree trunks and produce a

great amount of wax, that they mix to resin in order to build the nests. Their glandular

cells are columnar, with basal nuclei, enlarged intercellular spaces and perpendicularly

striated cytoplasm (figs. 1, 4). The height average of the epithelium in Trigona recursais

10um while in Cephalotrigona capitata reaches 16um. The greatest height found in

Cephalotrigona capitata is in accordance with its reported encreased wax productivity

(Rousik 1979, 1989).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 193-198, 5 de novembro de 2000

Comparative study of wax glands in four Meliponini bees... 195

Figs. 1 - 4. Wax glands (wg) of nurse workers: 1, Trigona recursa; 2, Lestrimellita limao; 3, Trigona hypogea;

4, Cephalotrigona capitata. The arrows point to the basal bulges of the glandular cells (c, cuticle; m, muscle;

n, nucleus; oe, oenocytes).

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 193-198, 5 de novembro de 2000

196 CAVALCANTE; OLIVEIRA & CRUZ-LANDIM

E a = \

Figs. 5 - 7. 5, Dorsal outer view of Trigona hypogea abdomen (II-VI tergites); 6, outer view of tergites of |

Cephalotrigona capitata showing the wax pores (wp); 7, inner view of Trigona recursa, (IN-V tergites) |

showing the wax gland (wg). |

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 193-198, 5 de novembro de 2000

| Comparative study of wax glands in four Meliponini bees... 197

Therefore the histological features and epithelial heights size data seem to confirm

| the expected condition from the observed behavior related to wax production by the

| species, that is, species that produce great amounts of wax have more developed wax

| glands than those species that requires less wax in their nests as Trigona hypogea, or use

| wax robbed from other bees as Lestrimelitta limao.

| Concerning, the features of the outer surface of the sternites a SEM dorsal view of

| the abdomen of Trigona hypogea shows a smooth surface without any differentiation

related to the presence of the wax gland (fig. 5), while in Cephalotrigona capitata were

observed pores full of wax crystals (fig. 6). The tergites of Trigona recursa, by the

internal surface, allowed to detect that developed wax epithelium (fig. 7), does not occupy

all the surface of the tergite, but forms two blocks medially separated by a glandular free

region between them.

The present results indicate that although the epidermis of the segments where in

the proper time a wax gland will develop, undergo changes in all species studied, the

histological features of the epithelium there differentiated and the height achieved by the

cells is different in each one. The results, show, also, that the developmental degree reached

by the wax epithelium is compatible with the amount of wax produced by the species.

Lestrimellita limao and Trigona hypogea besides have lower wax epithelium have

histological features that suggest that the wax producing cells present some abnormality

in the phase in which the wax must being produced, characterized by basal vacuolation of

the cytoplasm, which causes a bulging toward the body cavity.

| The results indicate that the wax glands development is adapted to the amount of

wax used in the nest construction (Trigona hypogea, T. recursa and Cephalotrigona

capitata) and to the way the wax is obtained (Lestrimelitta limao).

Acknowledgments. To FAPESP (Proc. 95/2946-9 and 97/0644-3); to CNPq (Proc. 351016/94-5). To

‚Dr. Ronaldo Zucchi (USP, Ribeirão Preto) for the bee specimens supply and for the information on bees

behavior and nest organization.

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Recebido em 13.08.1999: aceito em 07.04.2000.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89): 193-198, 5 de novembro de 2000

| 199

| O períodico IHERINGIA, SÉRIE ZOOLOGIA, editado pelo Museu de Ciências Naturais da Fundação

Zoobotânica do Rio Grande do Sul, destina-se a publicar trabalhos originais em Zoologia. E distribuído a Instituições

| congêneres em regime de permuta.

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| 1. Os manuscritos devem ser encaminhados com exclusividade ao Editor, em três vias, via ofício assinado por

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inglês, espanhol ou francês. A correção gramatical é de inteira responsabilidade do(s) autor(es).

| 2. Os trabalhos, sempre que possível, devem compreender os seguintes tópicos: Título; Nome(s) do(s) autor(es)

| (alinhados a direita é em coluna; nome e sobrenome por extenso e demais preferencialmente abreviados); Abstract (em inglês,

inclusive o título do trabalho); Keywords (no máximo cinco); Introdução; Material e Métodos; Resultados e Discussão;

| Agradecimentos e Referências Bibliográficas. À exceção do(s) nome(s) do(s) autor(es) e agradecimentos, todos os demais

elementos acima devem ser escritos em CAIXA ALTA. Todos os tópicos devem estar em negrito, exceto Keywords.

3. Não usar notas de rodapé, exceto a da primeira página, que deve conter apenas o endereço completo do(s)

| autor(es).

4. Os nomes genéricos e específicos, em itálico, ao serem citados pela primeira vez no texto, devem estar

acompanhados pelo nome do autor e do ano da publicação.

| 5. Citar a Instituição depositária dos espécimens que fundamentam a pesquisa, preferencialmente em Instituição

| com tradição e infra-estrutura para manter Coleções Científicas e com políticas de curadoria bem-definidas.

6. As referências citadas no texto (não usar Resumos, Teses e similares) devem ser feitas em VERSALETE (caixa alta

| reduzida): FonsEcA (1987), (Fonseca, 1987), FONSECA (1987:54). As referências bibliográficas devem ser dispostas em ordem

| alfabética e cronológica, segundo as normas da ABNT, salvo o ano da publicação, que deve seguir o nome do autor. Devem

iniciar junto à margem esquerda e deslocamento de 0,6 cm. As abreviaturas dos nomes de periódicos devem obedecer o “Word

| List of Scientific Periodicals”. Exemplos:

| SANTOS, E. 1952. Da ema ao beija-flor. 2. ed. rev. ampl. Rio de Janeiro, F. Briguiet. 335p.

| BERTCHINGER, R.B.E. & THomé, J.W. 1987. Contribuição à caracterização de Phyllocaulis soleiformis (Orbigny, 1835) (Gas-

tropoda, Veronicelidae). Revta bras. Zool., São Paulo, 4 (3): 215-223.

Referências incompletas ou de trabalhos não publicados não serão aceitas.

7. As ilustrações devem ser feitas preferencialmente a traço com nanquim, em papel vegetal e acompanhadas de

escalas em mm.

As ilustrações (desenhos, fotografias, gráficos e mapas) devem ser tratadas como figuras e numeradas com algarismos

arábicos sequenciais; devem ser montadas em cartolina branca, proporcionais às dimensões (12,5cm x 17cm), não ultrapassando

o dobro, adotando o critério de rigorosa economia de espaço. A Comissão Editorial reserva-se o direito de efetuar alterações na

montagem das pranchas ou solicitar nova montagem dos autores. As legendas devem ser impressas em folha(s) a parte. Ilustrações

a cores devem ser combinadas previamente e seu custo fica a cargo do(s) autor(es). As tabelas devem permitir uma redução para

um máximo de 12,5 cm x 7cm; devem ser numeradas com algarismos romanos e apresentar título conciso e claras explicações

que permitam sua compreensão, sem consultas ao texto. As figuras e tabelas devem se restringir ao estritamente necessário.

8. A elaboração da listagem do material examinado deve dispor as localidades de Norte ao Sul e de Oeste a Leste

e as siglas das Instituições compostas de 4 letras, segundo o modelo abaixo:

VENEZUELA, Sucre: San Antonio del Golfe, 59, 8.V1.1942, S. Karpinski col. (MNHN, 2547). PAN AMÁ, Chiriqui: Bugaba

(Volcán de Chiriqui) 3 O, 3 9, 24.VI.1901, Champion col. (BMNH, 1091). BRASIL, Goiás: Jataí, (Fazenda Aceiro), 3 O,

15.X1.1915, C. Bueno col. (MZSP); Paraná: Curitiba, 19, 10.XI[.1925, F. Silveira col. (MNRJ); Rio Grande do Sul: Viamão,

56, 17.X1.1943, S. Carvalho col. (MCNZ, 2147).

9. A seleção dos manuscritos far-se-á pela Comissão Editorial, após parecer de, no mínimo, dois referees. As

alterações de pequena monta serão feitas pela própria Comissão. Alterações mais substanciais serão solicitadas aos autores,

mediante a devolução dos originais, acompanhadas das sugestões. As provas tipográficas não serão enviadas ao(s) autor(es),

| Exceto em casos excepcionais.

10. Enviar cópia em disquete junto com a versão final do manuscrito.

11. Para cada artigo será fornecido, gratuitamente, um número fixo de 50 separatas, sem capa, que serão enviadas

para o primeiro autor.

Iheringia, Sér. Zool., Porto Alegre, (89):199, 20 de outubro de 2000

200

CONSULTORES CIENTÍFICOS DA IHERINGIA, SÉRIE ZOOLOGIA

ABEL LAVORENTI, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Universidade de São Paulo, SP; ApaLtO BIANCHINI, Depto de Ciênci-

as Fisiológicas, Fundação Universidade do Rio Grande, RS; ADRIANO B. Kury, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro,

RJ; ALEXANDRE BRAGIO BONALDO, Depto de Zoologia, Museu Paraense Emílio Goeldi, PA; ALFREDO LANGGUTH, Depto de Sistemática e

Ecologia, Universidade Federal da Paraíba, PB; ALFREDO V. PerETTI, Faculdad de Ciências Exactas, Físicas y Naturales, Universidad

Nacional de Córdoba; ALINE BARCELLOS, Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul, RS; AMILCAR

ARANDAS REGo, Depto de Helmintologia, Fundação Oswaldo Cruz, RJ; ALVARO ESTEVEsS MicorrTo, Centro de Biologia Marinha, Universi-

dade de São Paulo, SP; Ana MARIA DE Souza, Instituto de Biociências, Universidade de São Paulo, SP; Ana MARIA SETUBAL VANIN, Depto

Oceanografia Biológica, Universidade de São Paulo, SP; ANGELO AGoSTINnHOo, Universidade Estadual de Maringá, PR; AncELO M. B.

MACHADOo, Instituto de Ciências Biológicas, Universidade Federal de Minas Gerais, MG; Antônio CARLOS MARQUES, Depto de Biologia,

Universidade de São Paulo, SP; Antônio Domincos Brescovir, Laboratório de Artrópodes, Instituto Butantan, SP; ANTÔNIO RICARDO

Panızzı, Centro Nacional de Pesquisa da Soja, Empresa Brasileira de Pesquisas Agropecuárias, PR; Arno ANTÔNIO LisE, Faculdade de

Biociências, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, RS; CARLOS ALBERTO ARFELLI, Centro de Pesquisa Pesqueira Mari-

nha, Instituto de Pesca, SP; CarLOS EmíLio BENVENUTI, Depto de Oceanografia, Fundação Universidade do Rio Grande, RS; CARLOS F.S. |

ANDRADE, Instituto de Biologia, Universidade Estadual de Campinas, SP; CArLos H. W. FLECHTMANN, Depto de Zoologia, Escola Superior |

de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Universidade de São Paulo, SP; CArLos RiBEIRO VILELA, Depto de Biologia, Universidade de São '

Paulo, SP; CarLOS ROBERTO BRANDÃO, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; CARMINDA DA CRUZ LANDIN, Depto de Biologia, .

Universidade Estadual Paulista, SP; CéLio F. B. HapDaD, Depto de Zoologia, Universidade Estadual Paulista, SP; CeLso OLIVEIRA AZEVE- |

DO, Depto de Biologia, Universidade Federal do Espírito Santo, ES; César ADes, Depto de Pscicologia Experimental, Universidade de

São Paulo, SP; CLemE CosTA, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; CLóvis B. Castro, Museu Nacional, Universidade

Federal do Rio de Janeiro, RJ; DALTON DE Souza AMORIM, Depto de Biologia, Universidade de São Paulo, SP; DANTE MARTINS TEIXEIRA, |

Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, RJ; DiLmA SoLancE Nap», Depto de Zoologia, Universidade Federal do Paraná,

PR; EDMUNDO FERRAZ NoNATO, Instituto de Oceanografia, Universidade de São Paulo, SP; ELEONORA TRAJANO, Depto de Zoologia, Univer- |

sidade de São Paulo, SP; ELIANA MARQUES CANCELLO, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; ELIZABETH HórLING, Depto de |

Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; Eunice A. BiancHinı GALATI, Faculdade de Higiene e Saúde Pública, Universidade de São

Paulo, SP; FERNANDO D’IncAo, Depto de Oceanografia, Fundação Universidade do Rio Grande, RS; Francisco M. DE Souza BRAGA,

Universidade Estadual Paulista, SP; GEoRGINA Bonp-Buckur, Depto de Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, RS;

GermáÁN BOHÖRQUEZ MAHECHA, Depto de Morfologia, Universidade Federal de Minas Gerais, MG; GruserPE Puorro, Seção Museu Bioló-

gico, Instituto Butantan, SP; Gustavo A. SCHMIDT DE MELO, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; HeLoisa MARIA GODINHO, |

Instituto de Pesca, Secretaria da Agricultura, SP; HeraLDO A. Brıtskı, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; HiLDA DE

Souza Lima MESsQUITA, Instituto Oceanográfico, Universidade de São Paulo, SP; Hussan ZAHRER, Depto de Zoologia, Universidade de São

Paulo, SP; Inca L. V. MeEnDEs, Depto Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, RS; Jacques M. E. VIELLIARD, Depto de

Zoologia, Universidade Estadual de Campinas, SP; JAnırA MARTINS CosTA, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro,

RJ; João M. F. CamaRrGo, Depto de Biologia, Universidade de São Paulo, SP; JoÃo OLDAIR MENEGHETI, Depto de Zoologia, Universidade

Federal do Rio Grande do Sul, RS; Joaquim Júrio, Depto de Helmintologia, Findação Oswaldo Cruz, RJ; JocéLia GRAzIA, Depto de

Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, RS; Jorge Ferigolo, Museu de Ciências Naturais, Fundação Zoobotânica do Rio

Grande do Sul; JoRGE Jim, Depto de Zoologia, Universidade Estadual Paulista, SP; José ALBERTINO RAFAEL, Instituto Nacional de Pesqui-

sas da Amazônia, AM; José ALBERTO H. FREIRE, Depto de Biologia Animal, Universidade Federal de Viçosa, MG; José EDUARDO SERRÃO,

Depto de Biologia Geral, Universidade Federal de Viçosa, MG; José Henrique GUIMARÄAES, Museu de Zoologia, Universidade de São

Paulo, SP; José HENRIQUE PEDROSA-MAcEDO, Depto de Silvicultura e Manejo, Universidade Federal do Paraná, PR; José Lima DE FIGUEIREDO,

Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; José Luiz Moreira Leme, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; Jose

WILLIBALDO THoMé, Faculdade de Biociências, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, RS; JuLio CESAR GARAVELLO,

Depto de Ecologia e Biologia Evolutiva, Universidade Federal de São Carlos, SP; KerrH S. Brown, Depto de Zoologia, Universidade

Estadual de Campinas, SP; LriaNa FornERIs, Depto de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; Luis E. Costa, Faculdad de Ciências

Exactas, Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Córdoba; Luiz CARLOS CAMARGO BARBOSA FERRAZ, Escola Superior de Agricultura

“Luiz de Queiroz”, Universidade de São Paulo, SP; Luiz Dino Vizorro, Instituto de Biociências, Letras e Ciências Exatas, Universidade

Estadual Paulista, SP; Luiz OrÁávio MARCONDES MAcHADO, Depto de Zoologia, Universidade Estadual de Campinas, SP; Luiz R. Font!

Superintendência de Controle de Endemias, SP; Luiz RoBERTO TomMması, Depto Oceanografia Biológica, Universidade de São Paulo, 5+

Marcos Rocério CÂMARA, Depto de Oceanografia e Limnologia, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, RN; MARGARETI

MarrTEvI, Depto de Genética, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, RS; Marisa NARCISO FERNANDES, Depto de Ciências Fisiológi |

cas, Universidade Federal de São Carlos, SP; MArRTA FÁBIAN, Depto de Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, RS; |

MARTIN LinDsEY CHRISTOFFERSEN, Depto de Sistemática e Ecologia, Universidade Federal da Paraíba, PB; Massuka YAMANE NARAHARA, |

Instituto de Pesca, SP; MıGuEL A. Monn£, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, RJ; MıGUEL PETRERE JUNIOR, Depto

de Ecologia, Universidade Estadual Paulista, SP; MigueL T. U. RopriGuEs, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; Miriam

Davip MARQUES, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; NAERCIO MENEZES, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo,

SP; NELSON FONTOURA, Faculdade de Biociências, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, RS; NiLron José HEBLING.

Depto de Zoologia, Universidade Estadual Paulista Julio de Mesquita Filho, SP; Nıvar Gossi, Depto de Ecologia, Universidade Estad»

Paulista, SP; OLar H. H. MiELKE, Depto de Zoologia, Universidade Federal do Paraná, PR; Osmar DomaneschHi, Depto de Zoo!

Universidade de São Paulo, SP; Osmar MALASPINA, Depto de Zoologia, Escola Estadual Paulista, SP; OswaLDo Luiz Peixoto, Univers:

de Federal Rural do Rio de Janeiro, RJ; PauLo A. Buckur, Museu Nacional, Universidade Federal do Rio de Janeiro, RJ; PauLo

CunHa Lana, Centro de Estudos do Mar, Universidade Federal do Paraná, PR; PauLo Sércio Fiuza FERREIRA, Depto de Biologia Aniny

Universidade Federal de Viçosa, MG; Penro GnasPinı, Depto de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; PEDRO Marcos LinaRDI, Dept

de Parasitologia, Universidade Federal de Minas Gerais, MG; REIMAR SCHADEN, Universidade Federal de Brasília, DF; RENATO ConTIN

Marinont, Depto de Zoologia, Universidade Federal do Paraná, PR; RicarDO PinTo DA ROCHA, Universidade Bandeirantes, SP; ROBERTO |

AnTÔnIO ZuccHr, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Universidade de São Paulo, SP; ROBERTO E. Reis, Museu de

Ciências e Tecnologia, Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, RS; RoBERTO Sassı, Núcleo de Estudos e Pesquisas de

Recursos do Mar, Universidade Federal da Paraíba, PB; RonaLDo Zucht, Depto de Biologia, Universidade de São Paulo, SP; SERGIO A.

Vanın, Depto de Zoologia, Universidade São Paulo, SP; Sércio DE ALMEIDA RODRIGUES, Depto de Ecologia Geral, Universidade de São

Paulo, SP; Sérgio Rosso, Depto de Ecologia, Universidade de São Paulo, SP; SıLvanA THIENGo, Depto de Malacologia, Fundação Oswald

Cruz RJ; Sonia MARIA LAUER DE GARCIA, Depto de Ciências Morfolögicas, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, RS; Suzana EB

Amato, Depto de Zoologia, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, RS; THALES RENATO O. DE FREITAS, Depto de Genética, Univer-

sidade Federal do Rio Grande do Sul, RS; TimorHy P. Mourron, Depto de Biologia Animal e Vegetal, Universidade Estadual do Rio de

Janeiro, RJ; TosHre Kawano, Laboratório de Parasitologia, Instituto Butantan, SP; UBrRAJARA R. MARTINS, Museu de Zoologia, Univer-

sidade de São Paulo, SP; VALDIR A. TappEI, Universidade para o Desenvolvimento do Estado e da Região do Pantanal, MS; VERA Lúcia

IMPERATRIZ FONSECA, Depto de Ecologia, Instituto de Biociências, Universidade de São Paulo, SP; VERA MARIA FERREIRA DA SILVA, Instituto

Nacional de Pesquisas da Amazônia, AM; Vicror Py-DaAnier, Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, AM; ViNaLDO GRAF, Depto

de Zoologia, Universidade Federal do Paraná, PR; WALTER A. BOEGER, Depto de Zoologia, Universidade Federal do Paraná, PR; WALTER

NarcHt, Museu de Zoologia, Universidade de São Paulo, SP; WALTER R. TERRA, Instituto de Química, Universidade de São Paulo, SP;

WiLsoN FERNANDES, Seção de Venenos, Instituto Butantan, SP; WooDRUFF WHITMANN BENsoN, Depto de Zoologia, Universidade Estadual

de Campinas, SP.

Iheringia, Ser. Zool., Porto Alegre, (89):200, 20 de outubro de 2000

BEE

CONSULTORES DA IHERINGIA, SER. ZOOL., nº 89

Antônio D. Brescovit, Instituto Butantan, São Paulo, SP;

Carminda da Cruz Landim, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP;

Elizabeth Höfling, Instituto de Biociências, USP, São Paulo, SP;

Giuseppe Puorto, Instituto Butantan, São Paulo, SP;

Jacques M.E. Vielliard, Depto. de Zoologia, UNICAMP, Campinas, SP;

João M.F. Camargo, FFCLRP, USP, Ribeirão Preto, SP;

Joaquim Júlio Vicente, FIOCRUZ, Rio de Janeiro, RJ;

José Eduardo Serrão, Dept. Biol. Geral, Universidade Fed. Viçosa, Viçosa, MG;

Miriam David Marques, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP;

Osmar Malaspina, Instituto de Biociências, UNESP, Rio Claro, SP;

Paulo A. Buckup, Museu Nacional, UFRJ, Rio de Janeiro, RJ;

Ricardo Pinto da Rocha, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP;

Rosemara Fugi, NUPELIA, Univeridade Estadual de Maringá, Maringá, PR;

Suzana B. Amato, Instituto de Biociências, UFRGS, Porto Alegre, RS;

Ubirajara R. Martins de Souza, Museu de Zoologia, USP, São Paulo, SP;

Ulisses Caramaschi, Museu Nacional, UFRJ, Rio de Janeiro, RJ.

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Fundação Zoobotânica do Rio Grande do Sul

Programa de Apoio a Publicações Científicas

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