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An die geehrten Abonnenten der

„Hedwigia“.

B:e mannigfaltige Unterstützung von Seiten der Kryptogamen-

forscher hat der „Hedwigia“ in den letzten Jahren eine solche Fülle

von Stoff zugeführt, dass der Umfang der Zeitschrift weit über das

vor einigen Jahren festgesetzte Maximalmaass von 30 Bogen gestiegen

ist. Es ist unter diesen Umständen nicht mehr möglich, an dem

vor 3 Jahren festgesetzten Preise von 12M. festzuhalten, sondern es

muss, um directen pecuniären Schaden abzuwenden, eine Erhöhung

des Abonnementspreises eintreten. Nur schwer konnten sich Re-

daction und Verlag zu diesem Schritte entschliessen, da erfahrungs-

gemäss ein Einnahmeausfall bei Preiserhöhungen einzutreten pflegt.

Es wird aber Jedem bei einer Berechnung einleuchtend sein, dass

für einen Preis von 12 M., wovon dem Verlag nach Abzug des

Buchhändlerrabattes nur 9M. bleiben, nicht jährlich 36 Bogen, sowie

Tafeln und Figuren gegeben werden können. Es ist deshalb noth-

wendig, den Abonnementspreis auf 20 M. zu erhöhen.

Dafür allerdings bieten wir unseren Lesern eine Erweiterung der

Zeitschrift, indem jedem Hefte von jetzt an 4 Bogen Text beigegeben

werden sollen, wozu dann die 7 Repertorien noch ausserdem kommen

würden. Ferner sind wir gern bereit, entwickelungsgeschichtliche

Arbeiten, lithographische Tafeln (eventuell auch mehrfarbige) bei-

zugeben, sofern das Interesse der Arbeit dies verlangt. Dabei wird:

ER I

die Art und Weise, wie die Literaturnotizen gegeben werden, die-

selbe bleiben; möglichste Vollständigkeit und Schnelligkeit

in den Besprechungen werden auch weiterhin die Hauptpunkte sein,

die zu berücksichtigen sind. Gerade diese beiden Eigenschaften haben

der „Hedwigia‘“‘ viele Freunde erhalten und werden ihr noch manche

gewinnen,

Die werthvolle Fortführung der Saccardo’schen

Sylloge macht für jeden Pilzforscher die Zeitschrift un-

entbehrlich.

Die „Hedwigia“ ist die einzige Zeitschrift, welche die

Kryptogamenkunde in ihrem ganzen Umfange berück-

sichtigt. Für den Kryptogamenforscher wird durch sie

jede andere botanische Zeitschrift entbehrlich.

Redaction und Verlag der „Hedwigia“,

HEDWIGIA.

—.—

Organ

für

Kryptogamenkunde

nebst

Kepertorium für kryptogamische Literatur.

+ 15896. +

Redigirt

von

Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von

Paul Hennings und Dr. G. Lindau

in Berlin.

Begründet 1852 durch Dr. Rabenhorst als „Notizblatt für kryptogamische Studien“.

Fünfunddreissigster Band.

Mit 3 lithographischen Tafeln.

Erscheint in zweimonatlichen Heften.

Abonnement für den Jahrgang 12 Mark durch alle Buchhandlungen.

—

Dresden,

Druck und Verlag von C. Heinrich.

Es erschienen:

Pag. 1-48 (Taf. I—II) u. Repertorium I u. VII am 26. Februar.

Pag. 49——112 u. Repertorium II am 20. April,

Pag. 113—160 u. Repertorium III am 25. Juni.

Pag. 161—224 am 1. August.

Pag. 225—304 u. Repertorium IV/V am 30. October.

Pag. 305—366 u. Repertorium VI am 28. December.

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Inhalt.

Anmerkung. Für die Benutzung des Inhaltsverzeichnisses sei Folgendes bemerkt: Die

Namen der Kryptogamen sind vollständig aufgeführt, indessen bei den bekannten Arten

nur der Gattungsname, während bei den neuen Arten der volle Name und Autor steht. Bei

neuen Varietäten oder Formen ist der Name der Art ohne Autor und ein n. v. gesetzt. Neue

Gattungen sind gesperrt gedruckt. In den Nummern III—VI, die sich auf das Repertorium I—VI

beziehen, sind der Kürze wegen die Klammern bei den Seitenzahlen weggelassen.

I. Originalartikel. *)

Bresadola, J. Fungi aliquot saxonici novi a cl. W. Krieger lecti IV 19.

— Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller 276.

Hennings, P. Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. Myxomycetes, Phyco-

mycetes, Ustilagineae und Uredineae 207.

— Clavogaster, eine neue Gasteromycetengattung, sowie mehrere neue Agari-

cineen aus Neu-Sceland (mit Fig.) 308.

Hulting, J. Beiträge zur Flechtenflora Nordamerikas 186.

Jack, J. B. Ernst Stizenberger 34.

Juel, OÖ. Ueber Aecidium Galii Pers. (mit Fig.) 194.

Karsten, P. A. Fragmenta mycologica XLIV 42, 173.

Lindau, G. Zwei neue deutsche Pilze (mit Fig.) 56.

— Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. Einleitung 202.

— Bemerkung zu vorstehender Erwiderung (94).

Magnus, P. Eine sachliche Erwiderung (94).

Müller, F. Beobachtungen an Nanomitrium tenerum Lindb. (mit Fig.) 179.

Pazschke, O. Il. Verzeichniss brasilianischer von E. Ule gesammelter Pilze 50.

Renauld, F. und Cardot, J. Ergänzende Bemerkungen über die von Herrn

Dr. J. Röll in Nordamerika im Jahre 1888 gesammelten pleurocarpen

Moose 306.

Richter, P. Beiträge zur Phykologie I 263.

Röll. Nachtrag zu der in der Hedwigia erschienenen Arbeit über die von mir

im Jahre 1888 in Nordamerika gesammelten Laubmoose 58.

Schenck, H. Brasilianische Pteridophyten 141.

Schmidle, W. Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory (mit Taf. I--II) 1.

Stephani, F. Hepaticarum species novae IX 73.

Wagner, G. Mycologische Ausflüge im Gebiet des grossen Winterberges in

der Sächs. Schweiz 175.

Zopf, W. Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze 312.

*) Für den Inhalt der Originalartikel sind die Autoren allein verantwortlich.

bl Pr Rd 9 Böen

BL Inhalt.

II. Pflanzennamen des Textes.

Abrothallus 322, 323, 343—45, 362—64.

Acanthostigma 346.

Acarospora 314.

Acolium 348, 349.

Acrostichum 143, 145, 146, 171, 172.

Adiantum 142, 144, 145, 146, 158, 159.

Accidium 46, 52, 194—98, 256—62.

— asperulinum Juel 197.

— baccharidicola P. Henn. 262.

— Cerei P. Henn. 258.

— Colignoniae P. Henn. 258.

— Desmodii P. Henn. 259.

— Mikaniae P. Henn. 261.

— Niederleinii P. Henn. 261.

— Philibertiae P. Henn. 260.

— Randiae P. Henn. 259.

— Serjaniae P. Henn. 258.

— Solani argentei P. Henn. 260.

— Triumfettae P. Henn. 259.

— Vernoniae P. Henn. 262.

ie 344.

Albugo 210.

— Solivae Schroet. 210.

Alectoria 187, 193.

Alsophila 142, 143, 146, 156, 157.

Amblystegium 69, 311.

Amphoridium 65.

Anaptychia 314.

Andreaea 59.

Aneimia 144, 145, 146, 151.

Anthrophyum 145, 171.

Aphanizomenon 263—73.

— holsaticum P. Richt. 273.

Arcyria 207, 294.

— tenuis Schroet. 207.

Arthonia 187, 314, 318, 320, 329, 335,

343, 357—59, 362.

Arthopyrenia 327, 330, 336, 340, 344,

355, 359, 360, 363, 365.

Ascochyta indusiata Bres. 199.

Aspicilia 315, 316, 317.

Aspidium 142, 143, 144, 145, 146, 164, 165.

Asplenium 142, 143, 144, 146, 147, 162, 163.

Asterella microsphaeroides Rehm 52.

Asteridium Esterhazyae Rehm 53.

Azolla 142, 150.

Bacidia 318.

Bactridium 302.

Baeomyces 318.

Barbula 62.

— pseudo-aciphylla Kindb. 63.

— submegalocarpa Kindb. 64.

Belonidium 176.

Beloniella 178.

Bertia 357, 358.

Biatora 193, 318, 319.

Biatorina 319.

Bilimbia 320.

Blastenia 320.

Blechnum 142, 144, 145, 146, 161, 162.

Brachysporium Typharum n. v. 48.

Brachythecium 68, 307, 308, 309, 310.

— pseudo-erytrorhizon Kindb. 68.

Bryum 66, 67.

Bryum alpinum n. v. 66.

— squarrosum Kindb. 66.

Buellia 193, 320.

Cacoma 46.

Callopisma 321.

Calloria 54.

Caloplaca 187, 321.

Caloporia 44.

Calycium 323, 329, 342.

Camarosporium Kriegerii Bres. 200.

Camptothecium 68, 307.

Candelaria 321.

Cantharellus fuscipes Bres. 277.

Cassebeera 147, 159.

Catharinea 67.

Catocarpus 322.

Catopyrenium 322.

Celidiopsis 333, 356.

Celidium 318, 324, 326, 328, 332—34,

337—40, 344, 360, 362, 363, 366.

Cercidospora 317, 327, 353, 357.

Cercosporella macrospora Bres. 201.

Ceropteris 145, 146, 170.

Cetraria 187, 193, 322, 323.

Chaetomium marchicum Lindau 56.

Cheilanthes 144, 146, 159.

Chromosporium 301.

Chrysodium 172.

Cintractia 216, 217.

— leucoderma n. v. 5l.

Cladoderris 288.

Cladonia 187, 188, 193, 323, 324.

Clavaria Mucronella Bres. 290.

Clavogaster novozelandicus P, Henn,

303.

Cnemidaria 144, 156.

Collema 324, 325.

Colurolejeunea Ari Steph. 73.

— Junghuhniana Steph., 74.

— Karstenii Steph. 74.

Comatricha 208.

Coniangium 347, 348.

Conida 325, 327, 330—33, 335, 336, 339,

348, 350—53, 359, 361, 362, 366.

Coniophora Betulae Karst. 174.

Coniosporium 366.

— ferruginascens Karst. 49.

Coniothecium 341.

Coniothyrium 345.

Coprinus 279.

Corticium 46, 290.

— atratum Bres. 290.

— byssinum Karst. 174.

— rimicolum Rarst. 45.

— serum n. v. &.

— subochraceum 290.

— tuberculatum Karst. 45.

Cortinarius foetidus Karst. 4.

Coryne 46, 296.

Crepidotus condensus Bres. 278.

Cronartium verruciforme P. Henn.

245.

Crossotolejeunca cristulata Steph. 75.

— curvifolia Steph. 75.

EL May nd m en a ER BF he an Feng >

Inhalt. v

Crossotolejeunca grossiretis Steph. 75. | Epicymatia 315, 333, 346, 351, 352, 363.

— paucidentata Steph. 76.

Cyathea 143, 146, 147, 155.

— Schenckii Christ 155.

Dacampia 325.

Dacryodochium fluxile Karst. 47.

Dacryomitra Cudonia Bres. 293.

Dactylospora '320, 335, 341, 348, 350.

Danaea 144, 151.

Darluca 55.

Dennstaedtia 144, 157.

Diachea 208.

Diatrype 176.

Diatrypella 176.

Dichodontium subflavescens Kindb. 59.

Dicksonia 143, 145, 157.

Dicranolejeunea acutifolia Steph. 76.

— Didericiana Steph. 77.

— gilva Steph. 77.

— Renauldii Steph. 78

— saccata Steph. 78.

— setacea Steph. 78.

Dicranum 60, 61, 62.

— hyalinum Kindb. 61.

— perichaetiale Kindb. 61.

Dicranoweisia Roellii Kindb.

Didymium 209, 293.

— intermedium Schroet. 209.

Didymochlaena 144, 164.

Didymosphaeria 317, 319, 332, 334, 339,

346, 353, 359—62, 364, 365.

Dimelaena 325.

Dimerospora 325.

Dimerosporium annulatum Rehm 53.

Diplasiolejeunea armatiloba Steph. 80.

— Rudolphiana Steph. 79.

Diplazium 144, 163, 164.

Diplotomma 325.

Doassansia 220.

— Ulei Schroet. 220.

Doryopteris 142, 144, 145, 159, 160.

Drepanoconis brasiliensis Schroet.

et P. Henn. 211.

Drepanolejeunea Araucariae Steph. 80.

— Blumei Steph. 81.

— clavicornis Steph. 81.

— dentata Steph. 82.

— Eggersiana Steph. 82.

— obliqua Steph. 82.

— setistipa Steph. 83.

— subulata Steph. 83.

— Teysmannii Steph. 84.

— tricuspidata Steph. 84.

— trigonophylla Steph. 85.

Dussiella 300.

Eccilia Häusleriana P. Henn. 304.

Encalypta 66.

— extinctoria n. v. 65.

Endocarpon 326.

Endococcus 314, 318, 326, 328, 330, 337,

338, 340, 352, 354, 355.

Endogone reniformis Bres. 297.

Endopyrenium 326.

Entyloma 219.

— speciosum Schroet. et P. Henn. 220.

Epicoccum 364.

59, 60.

Ephebe 326.

Epiphora 344.

Erinella bambusina Bres.

— similis Bres. 296.

Eulejeunea azorica Steph. 85.

— Breutelii Steph. 85.

— caviloba Steph. 86.

— cladoloba Steph. 86.

— conceptionis Steph. 87.

— connatistipula Steph. 87.

— corallina Steph. 87.

— cuspidistipula Steph. 88.

— fissistipula Steph. 88.

— grandispica Steph. 89.

— grisella Steph. 89.

— Helmsiana Steph. 89.

— infestans Steph. 9%.

— Jungneri Steph. 90.

— lamacerina Steph. 91.

— Monimiae Steph. 91.

— Nietneri Steph. 91.

— ordinaria Steph. 92.

— parvisaccata Steph. 92.

— Patersonii Steph. 92.

— Perrottetii Steph. 9.

— setistipa Steph. 93.

— subigiensis Steph. 9.

— Uleana Steph. 94.

— Wichurae Steph. 9.

Euosmolejeunea Baileyana Steph. 9.

— condensata Steph. 9.

— incerta Steph. 96.

— integristipula Steph. 96.

— Luerssenii Steph. 97.

Eurhynchium 69, 311.

Eurotium 297.

Evernia 188, 325, 326.

Exobasidium Gaylussaciae P. Henn. 52.

Fabraea 177.

Favolus 284.

Flammula Schinziana P. Henn. 304.

Fomes 280.

— fulvo-umbrinus Bres. 280.

— Häuslerianus P. Henn. 305.

Fritzea 326.

Fuligo 209.

Funaria 66.

Fusarium 345.

Ganoderma renidens Bres. 280.

Gasparrinia 326, 327.

Geaster 293.

Geoglossum xylarioides Rehm 55.

Gibbera 298.

Gleoporus 284.

Grandinia fugax Karst. 173.

Grandiniella 45.

Graphiola 222.

Graphis 193, 327.

Grimmia 64. |

— tortifolia n. v. 64. |

Guepinia 29.

Gyalolechia 327.

Gymnogramme 145, 170.

Gymnosporangium 46.

(syrophora 188, 327, 328.

296.

vI Inhalt.

Haematomma 328.

Hagenia 328.

Harpalejeunea Mohrii Steph. 97.

— mucinata Steph. 97.

Helminthosporium 302.

Helotium aurantio-rubrum Bres. 295.

— cupreum Bres. 295.

— myriadeum Karst. 46.

— viridiflavescens Karst. 46.

Hemiarcyria 208, 294.

Hemionitis 145, 170.

Hendersonia 345.

Heppia 328.

Hirneola 291, 292.

Homalolejeunea corcovadensisSteph.98.

— Cruegeriana Steph. 98.

— extensa Steph. 9.

— Henriquesii Steph. 9.

Homostegia 327, 344, 346.

Hydnellum 173.

Hydnochaecte badia Bres. 287.

Hydnum 286.

Hygrocybe sulcata Karst. 43.

Hygrolejeunea bahiensis Steph. 9.

— cordigera Steph. 100.

— costaricensis Steph. 100.

— decurrens Steph. 101.

decurvifolia Steph. 101.

devexiloba Steph. 101.

grossecristata Steph. 102.

laxiretis Steph. 102.

parvicalycina Steph. 103.

patellirostris Steph. 103.

Patersonii Steph. 103.

petropolitana Steph. 104.

rosea Steph. 104.

Sullivantii Steph. 105.

— Tonduzana Steph. 105.

Hymenelia 328.

Hymenobia 337, 338.

Hymenochaeta 289.

— formosa n. v. 289.

Hymenochaetella fusca Karst. 174.

— rudis Karst. 173.

Hymenophyllum 143, 144, 146, 154, 155.

Hypnum 69—72, 308, 309, 311.

— aduncum n. v. 70, 71.

— fluitans n. v. 72.

— Iycopodioides n. v. 71.

Hypocrea 300.

— glaucescens Bres. 300.

— succinea Bres. 300.

Hypochnus microsporus Karst. 174.

— obscuratus Karst. 46.

Hypomyces 29.

Hypoxylon 176, 298.

Icmadophila 188, 328.

Illosporium 345, 351.

Jonaspis 328.

Irpex 287.

Isidium 328.

Isothecium 68, 69, 310.

— obtusatulum Kindb. 69.

Karschia 315, 317, 319, 320, 329, 331,

332, 340, 342, 344, 345, 349, 351—53,

357, 358, 360, 361, 364.

Kneiffia 287.

— nivea Karst. 173.

Koerberiella 329.

Kretzschmaria 298.

Lachnea 55, 29.

Lahmia 360, 361.

Lamproderma inconspicuum Schroet.

Laschia 285.

— flava Bres. 285.

— Mölleri Bres. 285.

— rubra Bres. 285.

Lecania 329.

Lecanora 188, 189, 193, 329—35.

Lecidea 189, 190, 193, 324, 333 — 39,

345, 352.

Lecidella 339.

Lecideopsis 328, 338, 353.

Leciographa 314, 316, 319—21, 327, 330,

332, 333, 338, 340 —43, 348—51,

357, 363, 365.

Lenormandia 339.

Lentinus 277.

Leocarpus 55.

Lepidopteris 142.

Lepiota 276.

Leptogium 190, 339, 340.

Leptolejeunea Balansae Steph. 108.

— foliicola Steph. 106.

— foraminulosa Steph. 106.

— longicruris Steph. 106.

— rhombifolia Steph. 107.

— Schiffneri Steph. 107.

— spicata Steph. 108.

— unguiculata Steph. 108.

Leptorrhaphis 351.

Leptosphaeria 324, 341, 344—46, 355,

356, 358, 361.

— densa Bres. 199.

Levieuxiella 47.

Libertiella 347.

Limnobion 70.

Lindsaya 144, 146, 147, 158.

Lithoicea 340.

Lomaria 142, 144, 145, 161.

Lomariopsis 144, 172,

Lopadium 340.

Lopholejeunea Andersonii Steph. 108.

— borbonica Steph. 109.

Finschiana Steph, 109.

Knightii Steph. 110.

muensis Steph. 110.

nicobarica Steph. 111.

owahuensis Steph. 111.

rivularis Steph. 111.

sundaica Steph. 112.

tecta (Mitt.) Steph. 109.

Wiltensii Steph. 112.

Loxoscaphe 143, 158.

Lycopodium 142 — 49.

Lygodium 144, 151, 152.

Marasmius 277.

— auklandicus P. Henn. 304.

Marattia 144, 150.

Marsilea 142, 150.

Massalongia 340.

e , \ a E

. Inhalt. vi

Mastigolejeunea taitica Steph. 112.

Melanomma 359.

Melanotheca 328, 344.

Melaspilea 320, 349.

Melogramma 175.

Meniscium 142, 170.

Mertensia 144, 145, 146, 152.

Merulius Mölleri Bres. et P. Henn. 285.

Metasphaeria 323, 329, 331, 332, 342.

Microglaena 340.

Microlejeunea acutifolia Steph. 113.

— atsuana Steph. 113.

— catanduana Steph. 113.

— crenulifolia Steph. 114.

— Cumingiana Steph. 114.

— grandistipula Steph. 114.

— Mandoni Steph. 115.

— rotundistipula Steph. 115.

— samoana Steph. 115.

— subulistipa Steph. 115.

Microthelia 323, 326, 359.

Midotis 296.

Mölleria sulphurea Bres. 298.

Mollisia 176, 177.

Mosigia 340.

Müllerella 314—16, 318, 329, 334.

— opegraphicola Zopf 342.

Mycobacidia 360.

Mycobilimbia 334, 341, 346, 348.

— Arnoldiana Zopf 358.

Mycogala firma Karst. 47.

Mycoporum 319, 345, 350, 366.

Myriogenospora 301.

Naematoloma irroratum Karst. 44.

Nanomitrium 179—85.

Nectria 47, 299, 314, 326, 345—48, 359.

— capitata Bres. 299.

— scitula Bres. 299.

Nephrolepis 143, 144, 146, 164.

Nephroma 190, 340, 341.

Nesolechia 318, 321, 323—25, 329, 330,

332, 335, 337, 343—45, 352, 360,

363, 364.

Normandina 341.

Obryzum 339, 342.

Ochrolechia 341, 342.

Odontia 286.

— flavo-argillacea Bres. 286.

Odontolejeunea minuta Steph. 116.

— paulina Steph. 116.

— subbifida Steph. 117.

— tocoriensis Steph. 117.

Ombrophila roseola Bres. 296.

Omphalaria 342.

Opegrapha 342.

Ophiobolus 347, 348.

Ophiodothis Gaduae Rehm 53.

— linearis Rehm 54.

Orbicula 341, 348.

Orthotrichum 65.

Öscillatoria 263 — 273.

Osmunda 142, 146, 151.

Otidea 294.

Pachyma 302.

Panaeolus 278.

Pannaria 190, 342, 343.

Panus 277.

Parmelia 190, 191, 193, 313—45.

Patellea 324.

Patinella 177, 335.

Peltigera 191, 193, 345, 347, 348.

Peltolejeunea galapagona Steph. 123.

— rotundistipula Steph. 123.

Penicillium 301.

Peniophora galochroa Bres. 290.

Peronospora 211.

Pertusaria 191, 348, 349, 350.

— Waghornei Hult. 191.

Pestalozzia truncata n. v. 48.

Peziza alpigena Lindau 57.

Phacopsis 326.

Phaeospora 318, 320, 322, 327, 330, 338,

339, 355, 356, 364, 366.

Pharcidia 314, 315, 317, 319, 321, 22,

325, 327, 329, 331—33, 336, 343,

352—54, 356, 358, 360, 363, 364.

Phegopteris 145, 165, 166.

Phialea ambigua Bres. et P. Henn. 29.

Philonotis 67.

— acutiflora Kindb. 67.

Phragmidium 245.

Phragmonaevia 347.

Phyllachora Julocrotonis Bres. 30).

Phyllosticta 47, 345.

— Amaryllidis Bres. 55.

— Chelidonii Bres. 199.

— straminella Bres. 199.

— uncialicola Zopf 324.

Physalospora 317, 318, 324, 334, 351.

Physarum 209, 293.

Physcia 191 —93, 350, 351.

Physiporus flavicans Karst. 44.

Physma 351.

Pilophorus 352.

Pirottaea 177.

Placidium 315, 365.

Placodium 352, 353.

Plasmopara 211.

Platylejeunea Kroneana Steph. 117.

Platysma 353.

Plectonema 263—73.

Pleopsidium 354.

Pleospora 346, 351, 359.

Pleuridium 59.

Pleurogramme 145, 171.

Pleurotus aggregatus Bres. 276.

Pluteus 278.

— phlebophoroides P. Henn. 304.

Polyblastia 354.

Polybotrya 144, 145, 172.

Polychidium 354.

Polycoccum 336.

Polypodium 142—47, 166—70.

Polyporellus melanopus n. v. 173.

Polyporus 279.

Polystictus 52, 280, 281.

— Mölleri Bres. 280.

Polytrichum sexangulare n. v. 67.

Poria 281 —83.

— carneola Bres. 282.

— graphica Bres. 282.

— pavonina Bres. 282,

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vIII Inhalt. s

Poria umbrinella Bres. 282,

Porocyphus 354.

Porpidia 354.

Pottia 62.

Prionolejeunea angulistipa Steph. 118,

— bicristata Steph. 118.

— prionodes Steph. 119.

— subobscura Steph. 119.

— validiuscula Steph. 119.

Protomyces 212.

Prototremella 45.

Psalliota 278.

Pseudoleskea 67, 306.

Pseudopeziza 47, 177.

Pseudotryblidium 319, 328.

Psilogramme 146, 170.

Psilotum 144, 149.

Psora 354, 355.

Psoroma 355.

Psorotichia 355.

Pteris 142, 144, 146, 150, 161.

Pterula arbuscula Bres. 291.

Ptycholejeunea birmensis Steph. 120.

— irawaddensis Steph. 120,

— Nietneri Steph. 121.

— Perrottetii Steph, 121.

— pyriformis Steph. 122,

— recondita Steph. 122,

Puccinia 46, 52, 228, 244.

— abnormis P. Henn. 243,

— Adesmiae P. Henn. 233.

— aristidicola P. Henn. 243.

— baccharidicola P, Henn. 242,

— Baccharidis cassinoidis P. Henn, 241.

— — cylindricae P. Henn. 241.

— — triplinervis P. Henn. 24.

— Bomareae P,. Henn. 242.

— Bougainvilleae Schroet. 232,

— Conyzae P. Henn. 239.

— Ditassae P. Henn. 236.

— elegans Schroet. 238.

— Flourensiae P, Henn. 235.

— Griseliniae Pazschke 52,

Gynotrichis P. Henn. 242,

Hieronymi P. Henn. 234.

Ben P. Henn. 229,

orentzii P. Henn. 239.

Metastelmatis P. Henn. 236.

Niederleinii P. Henn. 238.

Pereziae P. Henn. 241.

Piptocarphae P, Henn. 240.

Pterocaulonis P. Henn. 240.

Rouliniae P. Henn. 238,

sanguinolenta P. Henn. 228.

Solani tristis P. Henn. 236.

subdiorchidioides P. Henn. 24.

tumidipes n. v. 235.

Thlaspeos glaucophylli P, Henn. 229,

Pucciniosira 247.

Pycnolejeunea angulistipa Steph. 123.

— badia Steph. 124.

— bancana Steph. 124.

— decurviloba Steph. 125.

— Galatheae Steph. 125.

— gigantea Steph. 125.

— nicobarica Steph. 126.

ErkEttett]

Pycnolejeunea papulosa Steph. 126.

— utriculata Steph. 126.

Pylaisia 67.

Pyrenodesmia 355.

Pyrenopeziza 177, 334.

Pyrenopsis 355.

Racomitrium 64, 65.

— heterostichum n. v. 65.

Radulum umbrinum Bres. 287.

Ramalina 192, 355.

Ramularia 48.

— deflectens Bres. 200.

— filaris n. v. 200.

— rubicunda Bres. 200,

— Sagittariae Bres. 200.

Ravenelia 246.

— Cohniana P. Henn. 246.

— Mimosae sensitivae P. Henn, 246.

— Schroeteriana P. Henn. 245.

Rehmia 355.

Rhexoblephara 355.

Rhizocarpon 192, 193, 355—57.

Rhymbocarpus punctiformis Zopf 357.

Rhytisma Itatiaiae Rehm 54.

Ricasolia 357.

Rinodina 357.

Rosellinia 316, 323, 324, 341.

— alpestris Zopf 314.

— groedensis Zopf 350,

Russula pallida Karst. 43,

Salpichlaena 162,

Salvinia 142, 150.

Schizophyllum 278,

Schroeteria 221.

Schulzeria septentrionalis Karst. 343.

Sclerococcum 333, 349, 351.

Scleropodium 68.

Scolopendrium 144, 164.

Scutula 316, 347, 348, 354, 358, 359,

361, 362.

Selaginella 142, 144, 145, 146, 149, 150.

Septobasidium 290.

Septogloeum Aspidii Bres. 201.

Septoria 47.

Serpula 'rufa n. v. 45,

Siegertia 357.

Solenia 286.

Solorina 192, 357, 358, 359.

Sorosporium 221.

— Cenchri P, Henn. 221.

— Rhynchosporae P, Henn. 222.

Sorothelia 353.

Sphacelotheca 217.

Sphaerella 317, 326, 330, 341, 342, 365.

Sphaeria 316, 323, 326, 339, 348, 353,

363, 366.

Sphaeromphale 360.

Sphaeronema 336.

— Agaves Karst. 47.

Sphaerophorus 192.

Sphinctrina 331, 348—50, 364.

Sphyridium 360, 361.

Sporastatia 359, 360.

Sporodictyon 360.

Sporotrichum ambiguum Karst. 48.

— crassipilum Karst. 48,

———

Inhalt.

Sporotrichum floccosum Bres. 301.

Staganopsis 345.

Staganospora bufonia Bres. 200.

— Calami Bres. 199.

Stemonitis 208, 294.

Stereocaulon 192, 361, 362.

Stereum 288, 289.

— Mölleri Bres. et P. Henn. 288.

Sticta 192, 362, 368.

Stigmatomma 363.

Stilbum 302.

etrepsilejeunea acutata Steph. 127.

— Brotheri Steph. 127.

— campbelliensis Steph. 128.

cavistipula Steph. 128.

Curnowii Steph. 129.

denticuspis Steph. 129.

Gayana Steph. 129.

Lindenbergii Steph. 130.

simplex Steph. 130.

squarrosa Steph. 130.

trıcristata Steph. 131.

— Warnstorffi Steph. 131.

Synchytrium 209.

Tapesıa 176.

Taxilejeunea albescens Steph. 132.

— brasiliensis Steph. 132.

— Colensoana Steph. 132.

cuculliflora Steph. 133.

fusco-rufa Steph. 133.

Jeringii Steph. 134.

luzonensis Steph. 134.

macroloba Steph. 134.

martinicensis Steph. 135.

multiflora Steph. 135.

parvibracteata Steph. 136.

Stevensiana Steph. 136.

Uleana Steph. 136.

— Vallis gratiae Steph. 137.

Tetraphis "pellucida n. v. 66.

Thalloedema 363.

Thamnium 69.

Thamnolia 363.

Thecaptora Hieronymi Schroet. 221.

Thelephora 288.

Thelidium 354, 364, 366.

Thelocarpon 322, 358, 361.

Theloschistes 364.

Thelotrema 192, 364.

Thorea 1—33.

Thysanolejeunea appendiculata Steph.

— lanceolata Steph. 139.

— reversa Steph. 139.

Tichothecium 314—17, 319, 321, 322, 324,

335 —40, 349, 352—57,

326— 32,

362, 364—66.

Tilletia Ulei Schroet. et P. Henn. 218.

Tilmadoche 209, 293.

Tolyposporium minus Schroet. 218.

Tornabenia 364.

Torula 334, 335.

Er achylejeunca cristulaeflora Steph. 137.

— Didrichsenii Steph. 138.

— Spruceana Steph. 138.

Trametes 284.

Trichobelonium 177.

Trichomanes,143, 144, 146, 152, 153, 154.

Trichosphaeria 298.

Trichosporium tenellum Karst. 49.

Trichostroma aterrimum Karst. 48.

Tuberculina 222,

Tubulina 294.

Typhula 291.

Umbilicaria 193, 364..

Urceolaria 364.

Uredo 247—256.

Adenocalymmatis P. Henn. 249.

Alchorneae P. Henn. 232.

Alibertiae P. Henn. 254.

Aneimiae P. Henn. 255.

arenariicola P. Henn. 253.

Arrabideae P. Henn. 250.

Bambusarum P. Henn. 255.

Bidentis P. Henn. 251.

Coccolobae P. Henn. 253.

crotonicola P. Henn. 251.

Desmodii tortuosi P. Henn.

Dioscoreae P. Henn. 255.

Ditassae P. Henn. 249.

Elephantopodis P. Henn.

Epidendri P. Henn. 254.

Heterantherae P. Henn. 248.

Ipomoeae pentaphyllae P. Henn.

Kyllingiae P. Henn. 256.

nigropuncta P. Henn. 254.

Phyllanthi P. Henn. 248.

Siphocampyli P. Henn. 249.

— solenioides P. Henn. 250.

Urocystis 218, 219.

— Hieronymi Schroet. 218.

Uromyces 46, 223—27.

— Arachidis P. Henn. 224.

Borreriae P. Henn. 227.

Cajaponiae P. Henn. 226.

galericulatus Schroet. 225.

Glycyrrhizae n. v. 227.

Mulini Schroet. 224.

rhynchosporicola P. Henn.

rostratus P. Henn. 297.

— tener Schroet. 225.

Usnea 364.

Ustilago 212—16.

bicornis P. Henn. 50.

culmiperda Schroet. 212.

Hieronymi Schroet. 213.

insularıs P. Henn. 51.

leucostachyus P. Henn. 50.

microspora Schroet et P. Henn. 215.

Panici latifolia P. Henn. 216.

Schroeteriana P. Henn. 215.

subnitens Schroet et P. Henn. 215.

verrucosa Schroet 214.

— vesiculosa P. Henn. 51.

Ustilagopsis 222.

Ustulina 297.

Valsa 176.

Varicellaria 365.

Variolaria 365.

Velutaria 176.

Verrucaria 322, 354, 365, 366.

Virgaria cardiospora Bres. 301.

252.

253.

252.

226.

, Amann, ]J. 102, 119, 140.

2 bang ak 15 ih EEnldl nen ni le ran nn alas kl ehr 5 an ar u

Vittaria 143, 145, 171. |

Webera 66. i |

Weisia viridula n. v. 59.

Xanthoria 366.

Xenosphaeria 358, 361, 364.

III. Autorennamen

Aderhold, R. 52, 84.

Agardh, ]. B. 132.

Ahles v. 73.

Allescher, A. 23, 49, 85.

Allen, T. F. 43, 108.

Anders, ]J. 119.

Arcangeli, G. 28, 68, 90, 97.

Arnell, W. 88.

Arnold, F. 83, 115, 139.

Arnoldi, W. 141.

Arnould, E. 3.

Arthur, J. C. 2, 66.

Ascherson, P. 28, 37, 58, 65, 90, 97, 123.

Atkinson, G. F. 15, 28, 129, 141.

Aubert, A. B. 8, 41.

Babes, V. 3.

Bagnall, ]J. E. 88.

Bain, S. M.:73.

Baker 124.

Baldacci, A. 141.

Bambeke, Ch. v. 118.

Bamps, C. 37.

Barbey, W. 2.

Barbo, G. 134.

Bartholomew, E. 44, 107.

Barton, f. 5.138,

Batters, E. A. L. 39, 65, 102.

Bau, A, 52.

Bauer, E. 119, 120.

Baumann, A. 2, 140.

Baumgarten, P. v. 39, 67.

Bay, ]J. Chr. 85.

Bazoh 58.

Beach, S. A. 52, 85.

Beals, A. T: 58.

Beckett, T. W. N. 54.

Behrens, ]J. 67, 100.

Beleze, M. 129.

Benbow, J. 120.

Benecke, W. 23, 107.

Bennett, A. A. 67.

Benoit 39.

Berlese, A. N! 21, 23, 114.

Bertrand, G. 11, 78, 79, 135.

Bescherelle, E. 25.

Best, G. N. 88.

Biel, W. 67.

Biönski, F. 135.

Bitto, BY: 58

Blytt, A. 107.

Boh@me, Ch. 97.

Bokorny, Th. 44.

Böllev,.H. L. 8, 66; 61.

Boltshauser, A. 108.

Bomansson, J. ©. 120, 140.

Kain 3; le 2 ai ee a nd a 9 ah tens

x x y em R

bi re Ba and u

Inhalt.

Xerocarpus crustaceus Karst. 45.

Xylaria 297.

' Xylographa 198.

Zeora 366.

Zygodesmus truncatus Karst. 49.

des Repertoriums.

Bommer, Ch. 118.

Bommer, J. E. 142.

Borge, O. 42, 71, 133.

Borgensen, F. 129.

Bornmüller, ]. 90.

Boudier, E. 11, 49, 81.

Bourquelot, E. 11, 17, 44, 78, 79, 107.

Boutroux, L. 97.

Boye, P. 39.

Brand, F. 37, 105.

Brebner, G. 123, 135, 142.

Brefeld, O. 47.

Brenner, M. 120.

Bresadola, G. 135.

Briquet, ]. 37.

Britton, E; G, 25; 29,.120,.123.

Britzelmayr, M. 136.

Brizi, U. 85, 140.

Brotherus, V. F. 54, 140.

Brown, R. 54, 55.

Brun, J. 104, 134.

Brunaud, P. 17.

Brunotte, C. 40,

Buchenau, F. 97.

Bureau, E. 88, 120.

Burel; RB. 8,67.

Bürt, BE; A, 111,187;

Buscalioni, L. 118.

Bütschli, ©. 100.

Calkins, W. W, 115.

Cambier, A. 100.

Campanini, F. 139.

Campbell, D. H. 2, 37, 55, 120,

Camus, A. 29.

Camus: BE. G::29:

Camus, F. 26, 28, 88, 120.

Cardot, J. 28, 89, 120, 122.

Garletön. MA, 11

Garter, Gr. -W. 24,

Casteig 97.

Castracane, F. 70, 104.

Catiano, L. 100.

Cavara, F. 52.

Chappuis, C. 97.

Chatin, A. 19, 49, 81, 114, 138.

Cheney, L. S. 11, 26, 107, 120.

Chester,.G:: DE 106

Chodat, R. 9, 102, 105, 118.

Christ -H; 148:

Church, A. H: 4;

Clautriau, G. 11.

Clendenin, J. 52, 120.

Cleve, A. 9.

Cleve, P, T,.1%:

Clute, W. N. 90, 123.

Cockerell, T. D, A. 47.

Inhalt. xI

wohn, BD, 37,

Colenso, W. 58.

Collins, F. S. 40, 100.

Conn, H. W. 100.

Conti, P. 26.

Cooke, M. C. 11.

Cooley, R. A. 73.

Corboz, F. 129.

Correns, C. 26, 55.

Costantin, J. 11, 47.

Coville, F. V. 38.

W085 C. F, 134.

Craig, T. 73, 110.

Cramer; C. 42, 48, 97.

Crato BR N.

Crisafulli, G. 3.

Qulmann #P.26.

Cunningham, D. D. 110.

Cushing, H. B. 123.

Cypers, V. v. 107.

D’Almeida, V. 11.

Da Motta Prego, ]. 11.

“ Dangeard, P. A. 15, 16, 99, 107, 110, 114.

Darbishire, ©. V. 106.

Davenport, G. E. 123.

Davis, B. M. 72.

D’Aymeric, A. M. 58.

D’Aymeric, H. M. 58.

Debat, L. 141.

Deby, J. 134.

Deckenbach, C. 110.

De Cordemoy, E. %.

De Cordemoy, H. L. M.

Deflers, A. 129.

Degagny, Ch. 43, 71, 129.

Denaiffe, C. 123.

Denaiffe, H. 123.

De Seynes, 79.

Desplantes, F. 129.

De Toni, G.B. 4, 6, 10, 38, 44, 65, 129.

Deutsch, R. 111.

Devaux 65.

De Wildeman, E. 2, 9, 16, 40, 44, 68,

71, 102, 107, 132.

Dietel,=P. 17, 111

Dismier, E. 5b.

Dismier, G. 141.

Dixon, H. N. 120.

Dodge, R. 142.

Dörfler, J. 65.

Drevs, P. 68.

Druery, C. T. 123.

IDufour, LE31.

Duggar, B. M. 47.

Dumond, A. M. 105.

Dupain, V. 137.

Dutertre, E. 107.

Dyar, H. G. 67.

Earle, F. S. 76, 109, 114, 137.

Edwards, A. M. 42.

Eichler, B. 153.

Eliasson, A. G. 49, 135.

Elion, H. 100.

Ellis, J. B. 12, 19, 44, 107, 137.

Elmore, C. J. 104.

Eriksson, J. 17, 111, 112, 137.

Escombe, F. 108.

Evans, A. W. 55, 120.

Everhart, B. M. 12.

Falkenberg, P. 38.

Fantozzi, P. 29.

Farlow, W. G. 2.

Farmi, C. 100.

Fautrey, F. 16, 73, 135.

Fermi,’ €1.8% >

Ferry, R. 73, 112, 137.

Field, H. C. 58.

Finck, H.128:

Fink, B. 22, 50, 115.

Fischer, E. 11, 18, 23, 138.

Fisher, J. ©. R. 83.

Flagey, C. 22.

Förster, J. B. 88.

Forsyth Major, €. ]J. 2.

Foslie, M. 44. 106.

France, R. 48.

Frank, A. B. 49, 65.

Frank, G. 67.

Freudenreich, E. v. 3, 100.

kuchs’ 1. 109:

Fünfstück, M. 50.

Galloway, B. T. 19, 108.

Geheeb, A. 121.

Geneau de Lamarliere, L. 38, 55, 129.

Gibson, E. 4.

Gibson, R. J. H. 9%.

Gibson, W. H. 12.

Giesenhagen. K. 19.

Gilg, E. 98.

aller:

Glaser, F. 3.

Glück, H. 115.

Goebel, K. 88.

Goiran, A. 29.

Gomont, M. 133.

Graebner, P. 38.

Green, W. ]. 73.

Grilli, C. 22, 121.

Grimm, M. 131.

Groenland, Ch. 129.

Grout, A. J. 121.

Gruber, E. 134.

Guinet, A. 121.

Gutwinski, R. 8. 40.

Haläcsy, E. v. 58.

Hall, C. M. 3.

Hallıer, E. 85.

Halstedt, B. D. 23, 73, 108.

Hansen, C. D. 69.

Hansen, C. ©: 129,

Hansen, E. Chr. 23.

Hariot, P. 101, 109, 135.

Harlay, A, 12.

Harlay, V. 12, 18.

Harper, R. A. 20, 49.

Hartig, R. 21.

Harvey, F. L. 49, 51, 100.

Harz, K. 142.

Hasse, H. EB. 116, 139.

Havemann, H. 3.

Hebebrand, A. 23.

Heim, €. 123.

’

al ai ra Fu ZW Ze a

xo Inhalt.

Heinricher, E. 124.

Hemsley, W. B. 124.

Henning, E. 112.

Hennings, P. 12, 13, 73, 79, 85, 108, 114.

Henriques, J. A. 22, 29.

Herfeldt, E. 3.

Herissey, H. 11, 17.

Hiltner, L.'28, 132.

Hirn; RE. 40,48,

Hofmann, H. 29.

Hollick, A. 29.

Holm, J. €. 118.

Holmes, E. M. 103, 106.

Holway, E. W. D. 107.

Holzinger, J. M. 2, 26, 89, 90.

Hooker 124.

Hope, C. W. 90.

Hori, S. 78, 1836.

2örn, M, £. C..189;

Howe, M. A. 89.

Huber, J. 9.

Hue; 22,116,

Humphrey 4.

zuge BR, 89.

Jacobasch, E. 79, 112.

Jaczewski, A, de 21, 49, 108, 114, 138.

James, ]J. F. 44.

Jamin, V. 155.

Jarius, M. 52.

eaupert 124.

egunow, M. 39, 101.

enke, A. 40.

gnatieff, V. 79.

oergensen, E. 55.

Torte‘ R. 106.

ones, L. R. 118.

Se M. E. 78.

Jonkmann, H., F. 9%.

Jörgensen, A. 59.

Jost, L. 10.

Ishikawa, C. 109.

Issatschenko, B. 108.

Istvanffy, G. v. 13, 18, 47, 112, 136, 137.

Juel, H. ©. 112.

Jungfleisch 2.

Kaalaas, B. 56.

Kaiser, O. 72.

Kaiser, P. 89, 121:

Karsten, G. 104.

Karus, L. 75.

Kayser, E. 85.

Kedrowski, W. 3.

Kern, F. 56.

Kernstock, E. 116.

Kindberg, N. C. 26, 27, 56, 121.

King, Th. 105.

Kirchner, ©. 108.

Klebahn, H. 48, 70, 79, 108.

Klebs, G. 129.

Klecki, V. v. 39, 101.

Klercker, ]J. 71.

Kloeber, C. 73.

Klöcker, A. 24, 85.

Knabe, C. A. 89.

Knoll, M. 42.

Kornauth, K. 101.

Kozlowski, W. 40.

Kremer, ]J. 118.

Krüger, W. 108.

Kuntze, O. 90.

Laborde, ]J. 21.

Lafar, F. 86.

Lagerheim, G. v. 14, 131.

Laing, R. M. 40.

Lambotte, E. 73, 135, 138.

Lankester 124.

Lataste, F. 108.

Lauterborn, R. 42.

Lederer, M. 83.

Leger, M. 46, 110.

Le Grand, A. 58.

Leichmann, G. 118, 131.

Le Jolis, A. 56.

Lemmermann, E. 41, 69, 108.

Lepierre, Ch. 8.

Lendner, A. 118.

Lesage, P. 24.

Levier, E. 27.

Liebermann, L. 53.

I-impricht, D..141:;

Lindau, G. 81.

Lindner, P. 23, 24, 86, 119.

Linton, E. F. 65.

Linton, W. R. 29, 65.

Eiotard, P. V; 89,-121;

Lippert, Ch. 100.

Lister, A. 66.

Lloyd, 6. Gi.

Lodeman, E. G. 74.

Loesener,;:.Ih,22, 97.

Loew,. I.8,

Lorch, W. 116, 121.

Lortst, 2. 97.

Lowe, E. ]J. 58,

Lübstorf, W. 90, 112.

Lunt, J. 181.

Macbride, T. H. 108, 112, 137.

Macchiati, L. 71.

Mac Millan, C. 59.

Macvicar 122,

Männel, 98.

Magnus, P. 16, 38, 50, 74, 76, 79, 80,

84, 111,236.

Makino, T. 142.

Malme, G. O. A. 22, 83, 116.

Mangin, L. 110.

Marchal, E. 13, 74, 108.

Marchall, E. S. 98.

Marchand, L. 74, 108.

Marmier, L. 101.

Massalongo, C. 82, 89.

Massee, :(7,:50,:74, 76,112:

Matouschek, F. 122, 141.

Matruchöt, %E, 11, 58:

Matsudeira, H. 2.

Mattirolo, OÖ. 17, 109, 113, 114, 115.

Maul, R. 102.

Maurizio, A. 76, 77.

Mc Ardle, D. 122.

Mc Fadden, E. B. 122.

Mc Weeney, E. L. 4.

a ner ae HE u

Inhalt. It

Meehan, T. 59, 142.

Mer, E. 14.

Meyer, A. 91.

Migula, W. 67, 68.

Millspaugh, C. F. 139.

Minks, A. 51. :

Miyoshi, M. 14, 45, 131, 132.

Möbius, M. 10, 137.

Möller, A. 136.

Molisch, H. 69.

Molliard, 45.

Montemartini, L. 10.

Morgan, A. P. 116.

Morgan, R. A. 45.

Morini, F. 46.

Motöt, E42.

Motelay, L. 29.

Müller, F. 89.

Müller, ]. 22, 51, 116, 139.

Müller, K. 27.

Müller, ©. 9, 42, 70.

Murray, G. 8, 71.

Nandor, F. 10.

Nastukoff, A. 53.

Nathorst, A. G. 27.

Nawaschin, S. 115, 139.

Neger, F. 111, 113, 136, 138.

Nelson, E. M. 2.

Nichols, M. A. 138.

Nicotra, L. 124.

Niel 113.

Noack, F. 45.

Nobbe, F. 132.

Nou, EP. 2%

Nuttall, L. W. 139.

Nylander, W. 116.

Nyman, E. 22, 28.

Oestrup, E. 134.

Okamura K. 11, 135.

Olsson, P. 59.

Omelianski, V. 3.

Omori, ]J. 78.

Österhout, W. J. V. 69, 106.

Palmer, C. 124,

Pammel; BB: 67198.

Pammel, IarER 40 21,182.

Paris, E. G. 56.

Pasteur, 12:

Patouillard, N. 14, 18, 45, 80, 109, 138.

Patterson, F. W. 21, 115.

Paulin, A. 142.

Pax, F. 66.

Pearson, W.-H. 122.

Peck, Ch. H. 14, 136.

Peglion, V. 16.

Penhallow, D. P. 69, 103.

Perraud, J. 101.

Persson, ]J. 89.

Peucker, KE. 41.

Pfeiffer, R. v. W, 106.

Philibert, A. 122.

Philibert, H. 56.

Phillips, R. W. 106.

Pieters, A. L. 48.

Pirotta, R. 142.

Pizzigoni, A. 24.

Poirault, G. 80.

Pomponi, E. 139.

Preda, A. 124.

Preuss 113.

Prillieux, E. 86.

Pringsheim, N. 2, 98.

Prior, E. 119, 139.

Prunet, A. 87.

Puriewitsch, K. 24.

Raciborski, M. 77, 80.

Rapp. R. 140.

Rathay, E. 101.

Rauch, F. 18.

Ravaz, L. 101, 119.

Ray, J. 45.

Rechin, J. 28, 56.

Reed, M. 122, 142.

Reess, M. 98.

Rehm, H. 82.

Reinke, J. 84.

Renauld, F. 28, 89, 122.

Renault, B. 101, 103, 124.

Renesse, A. v. 75.

Renon 87.

Reuter, G. 46, 75.

Richards, H. M. 80, 113.

Richter, A. 59.

Rehiter ua 43:

Ritthausen, H. 140.

Ritzema Bos, ]J. 15.

Roberts, M. 122.

Robertson, D. 106.

Rodegher, E. 141.

Rodriguez, J. J. 72, 133.

Roell, J. 27.

Rolland, L. 75.

Roloff, F. 67.

Roloff, R. 39.

Römer, H. 98.

Rostrup, E. 75, 80, 109, 113, 136, 137.

Rothert, W. 105.

Roze, E. 39, 68, 101, 102, 132.

Rullmann 39.

Rydberg, P. A. 142.

Saccardo, D. 66.

Saccardo, P. A. 17, 21, 75, 109.

Sandri, G. 29.

Sappin-Trouffy 48, 109, 113.

Saunders, C. F. 29, 124.

Sauvageau, C. 43, 71, 104, 105, 135.

Schawo, M. 70, 104.

Schenck, H. 2.

Schiffner, V. 57, 66, 98.

Schilbersky, K. 9, 42, 46, 66.

Schiller, K. 38, 131.

Schilling, A. J. 69.

Schimper, A. F. W. 2.

Schinz, H. 122, 124, 131.

Schiönning, H. 24, 85.

Schirokikh, J. 68.

Schmidle, W. 40, 71, 108.

Schmidt, H. 124.

Schmitz, F. 4.

Schneider, A. 22.

Scholz, E. 125.

Schorler, B. 59.

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XIV Inhalt.

Schostakowitsch, W. 24.

Schroeder, B. 8, 69.

Schroeder, E. A. 75.

Schukow, J. 140.

Schumann, K. 98.

Schwalb, K. 80.

Scott 1). BE; 59, 9.

Seemen, O. v. 98.

Seiter, O. 119, 140,

Selby, A. D. 78.

Setchell, W. A. 43, 68, 69, 72, 102, 104.

Sewerin, S. A. 3.

Sheldon, E. P. 2.

Shimek, B. 131.

Shirai, -M. 187.

Simmons, H. G. 91, 141.

Slater, B. 57.

Small, J. K. 9.

Smith 124.

Smith, A. A. 106.

Smith, A. L. 115.

Smith, E. F. 25, 102, 109, 132.

Smith, J. D. 29.

Solla, F, 9.

Sorauer, P. 53, 75, 87, 136.

Sorel, E. 25.

Starbäck, K. 46, 50, 115.

Stavenhagen, A, 3.

Steiner, J. 51, 116.

Stenzel, G. 59.

Stephani, F. 57.

Sternberg, G. M. 102.

Stewart, E. C. 109, 113.

Stizenberger, E. 23.

Stolley, E. 71.

Störmer, G. 137.

Strasburger, E. 2.

Sturgis, W. C. 76, 78, 82, 87.

Stutzer, A. 3, 67, 102, 132.

Swan,:A. P.: 54.

Swingle, W. T. 87, 136.

Takahashi, Yan

Tassi, F. 8, 15, 42, 87, 109, 119, 140.

Taubert, P, 29.

Thaxter, R. 16, 46, 110.

Theriot 57.

Thiele, R. 87, 140.

Tichomirow, W. 138.

Tilden, J. G., 39, 70.

Tobisch, J. 109.

Tognini, F. 119.

Tonduz, A. 66.

Tonglet, A. 84.

Frabüt, 17.

Tracy, S. M. 109.

Trautmann, C. 89.

Tucker, G. M. 119.

Ulsamer, J. A. 113.

IV. Pflanzennamen

Abietinella Giraldii K. Müll. 27. |

Acanthopeltis 7.

Acanthostigma Chusqueae Pat. 14.

— scopulorum EIl. et Ev. 12,

Underwood, L. M. 28, 57, 76, 82, 109,

186, 137, 141:

Valentine, &,.S::91, 128.

Vallot, J. 117, 125.

Van Aubel, M. 29.

Venturi 57, 122.

Vestergreen, T. 110.

Viala, R. 119.

Vidal, L. 125.

Vill, A. 84.

Voglino, P. 15, 110, 113.

Voigt, A. 58.

Vuillemin, P. 15, 46, 47, 76, 83.

Wager, H. 111.

Wagner, G. 83, 110, 113.

Wagner, H. 48, 140.

Wainio, E. A. 117.

Waite, M. B. 102.

Wakker, ]J.H. 48, 68, 76, 111, 114, 119, 136.

Wälde, 28.

Walters, L. L. 115.

Warming, E. 9.

Warnstorff, C. 28, 58.

Waters, C. E. 59, 142.

Webber, H. J. 87, 136.

Weber van Bosse, A. 106.

Wegelin, H. 139.

Wehmer, C. 15, 18, 21, 88, 110, 115.

Weidmann, A. 89.

Weigmann, H. 68.

Wendisch, E. 49.

Went, F. A. F. C. %6, 80.

West, G. S. 41, 104, 105.

West, W. 40, 104, 106.

Wheeler, H. ]J. 119.

Whitwell, W,. 91.

Will, H. 119, 140.

Willey, H. 117.

Williams, Th. A. 140.

Williamson, W.,C. 59, 9.

Wilson, F. 59, 125.

Winogradsky, S. 102.

Winterstein, E. 38, 46.

Wittlin, J. 102, 132.

Woodworth, C. W. 110.

Woronin, M. 115, 139.

Wulff, Th. 91.

Wünsche, O. 110.

Wüst, E, 125.

Wüthrich, E. 3.

Yasuda, A. 19, 1383.

Zacharias, O, 4.

Zahlbruckner, A. 139.

Zanfrognini, C. 104.

Zeiller, R. 91, 123.

Zelenetzky, N. 117, 125, 141.

Zopf, W. 117.

Zukal, H. 51, 117.

des Repertoriums.

Acetubularia 30.

Acinetospora 6.

Acremoniella atra n. v. 14.

— verrucosa Togn. 119.

Inhalt.

Acroblaste 9.

Acrochaetium endophysicum Batt. 102.

Acrolejeunea cordistipula Steph. 57.

Acrostichum Pringlei Davenp. 123.

Actinema 6.

Actinonema 61, 93.

Adiantum tenuissimum Taub. 29.

— viridescens Colenso 58.

Aecidium 48, 109, 113 125.

— importatum P. Henn. 79.

Agaricus 18, 74, 113.

Agarum 7.

Aitonia fissisquama Steph. 57.

Aldridgea 74.

Alectoria pacifica Stizenb. 23.

Aleuria quitensis Pat. 14.

Alternaria 76, 87.

Amanita 18, 75.

Amanitopsis velosa Peck 14.

Amansia multifida n. v. 103.

Amblystegium fallax n. v. 98.

— pseudo-confervoides Kindb. 26.

— sinensi-subtile K. Müll. 27.

— trinerve Broth. 54.

Amerosporium cinctum EIl. et Ev. 12.

Amphiloma microlobum Müll. Arg. 51.

Amphisphaeria 19, 31.

— confertissima EIl. et Ev. 12.

— Phoenicis Pat. 45.

— pilosella EIl. et Ev. 12.

— rhodella Pat. 14.

Anabaena 30.

— Bornetiana Coll. 100.

— catenula n. v. 100...

— stricta Hansen 69.

Anadyomene 91.

Aneimia eximia Taub. 29.

— pyrenea Taub. 29.

Aneura barbiflora Steph. 57.

Angiopteris 90.

Anomobryum filiforme n. v. 122.

Anomodon 121, 141.

— asperifolius K. Müll. 27.

Giraldii K. Müll. 27.

scaberrimus Broth. 54.

sinensis K. Müll. 27.

sinensi-tristis K. Müll. 27.

Antennaria 138.

Anthoceros 120.

Anthophycus 135.

Anthostomella albocincta EIl. et. Ev. 12.

Antithamnium 7, 30.

Antitrichia 26.

Aphanochaete 91.

Aplococcus natans Roze 132.

Apodachlya 111.

Aposphaeria ohioensis EIl. et. Ev. 12.

Arachnopeziza 32.

Araiospora 110, 111.

Arcyria 2.

Arethina 32.

Armillaria 79.

— mellea n. v. 13.

Arrhenia cupuliformis P. Henn. 13.

Arthonia aleuromela Nyl. 139.

— Elliotii Wain. 117.

Arthonia microsticta Wain. 117.

Arthopyrenia porospora Wain. 117.

Arthotheliopsis hymenocarpoides Wain.

117.

Arthothelium ferax K, Müll. 139.

Arthrinium 126.

Arthrocladia 6,

Arthrospira 91.

Ascobolus 49, 82, 147.

— glaber n. v. 14.

Ascochyta 23, 52.

— Doronici All. 61.

— evonymicola All. 61.

— zeicola EI. et. Ev. 12.

Ascocyclus 91.

Ascoidea 138.

Ascomycetella quitensis Pat. 14.

Ascophanus Opuntiae Pat. 45.

— rosellus Starb. 147.

Ascophyllum 91, 134.

— nodosum n. v. 39.

Ascospora 114.

Aspergillus 23—25, 85, 87, 107.

Asperoccous 30.

Aspicilia simulans Kernst. 116.

Aspidium 59, 142.

— prominulum Christ 142.

— scabriusculum Davenp. 123.

— strigillosum Davenp. 123.

Asplenium 29, 59.

— ceratolepis Christ 142.

crenato-serratum Bomm. 142.

Donnell-Smithii Christ 29,

Eatoni Davenp. 123.

fibrillosum Pringle et Davenp. 123.

Laurentii Bomm. 142.

Mackinonni Hope 90.

— Stepherdi n. v. 29,

Asplenum 90.

Asteridium Chusqueae Rehm 150.

Asterina calotheca Pat. 14.

— crustosa n. v. 14.

— solanicoloides Rehm 150.

Asteroma 60, 61.

— Codiaei All. 23.

— infuscans EIl. et. Ev. 12.

— Parkinsoniae EIl. et Ev. 12.

Asterostroma Gaillardi Pat. 45.

Astromyelon 59.

Atheya 42.

Athyrium 58.

— pterorachis Christ 142.

Auricularia 109.

Axillaria 134.

Bacidia 22.

Bacillus 131.

— coccineus Catiano 100.

— Gramma B. Ren. 101.

— ozodeus B. Ren. 101.

— rubiginosus Catiano 100.

Bacterium Dianthi Arth. et Boll. 66.

Balansia Jungneri P. Henn. 12. N

Balsamia 138.

Barbula anthropophila K. Müll. 27.

— arcuata K. Müll. 27.

— eroso-denticulata K,. Müll. 27.

5 Zu au Susi Bd En

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Ben ie ee a

xVvI Inhalt.

Barbula helvetica Kindb. 27.

— rufidula K. Müll. 27.

— schensiana K. Müll. 27,

— sinensi-fallax K. Müll. 27.

— sinensis K. Müll. 27.

— subcuneifolia Kindb. 56.

— subtortuosa K. Müll. 27.

— tectorum K. Müll. 97.

— torquatifolia Geh. 122.

zygodontifolia K. Müll. 27.

Berlara 51, 126.

Bartramia crispo-ithyphylla K. Müll. 27.

Basidiobolus 77.

Batrachospermum 6, 72, 9.

Belonidium andinum Pat. 14.

— Chusqueae Pat. 14.

— microscopicum Pat. 14.

Belonium sulfureo-tinctum Rehm 146.

Biatora exemptilis Arn. 139.

— phaeophora Stizenb. 116.

Biatorella 147.

Bifurcaria 134.

Blastenia ochroleuca Mült. Arg. 22.

Blastocladia 46.

— ramosa Thaxt 46.

Blindia 54.

Blossevillea 5.

Boletus 79, 126.

— tunetanus Pat. &.

Bonnemaisonia 106.

Bornia esnostensis B. Ren. 124.

— latixylon B. Ren. 124.

Bostrychia 30.

Botrydium 130.

Botryococcus sudeticus Lemm. 41.

Botryodiplodia ostiolata El. et Ev. 12.

Botrytis 61, 139.

— fulgens March, 14.

Boudiera 82.

Boudierella nana March. 14.

Bovista 112.

— cellulosae EIl. et. Ev. 12.

ea. Ar pedunculatum EIl, et

Ev. 11.

Brachysteleum microcarpum K, Müll. 27.

— Sohritytloides K. Müll. 27.

Brachythecium 141.

— amnicolum K. Müll. 27.

calcareum Kindb. 27.

campylothallum K. Müll. 27.

cavernosum Kindb. 26.

homocladium K. Müll. 27.

micrangium K. Müll. 27.

papilliferum K. Müll. 27.

permolle K. Müll. 27.

pinnirameum K. Müll. 27.

subintricatum Kindb. 27.

— tromsoeense Kaurin 141.

Bremia 126.

Broomella Lagerheimii Pat. 14.

Bryum 88,

— alandicum Bom. 120.

— campylopodioides K. Müll. 27.

— clegans n. v. 88

— flavescens Kindb. 56.

— flexicaule K. Müll, 27.

3234943332

Bryum germiniferum K. Müll. 27.

— Giraldii K. Müll, 27.

— lepto-tagellans K. Müll. 27.

— leptorhodon K. Müll. 27.

— nemicaulon K. Müll. 27.

— oediloma K. Müll. 54.

— oedoneurum K. Müll. 27.

— revelstokense Kindb. 56.

— Sandbergii Holz. 2.

— speirophyllum Kindb. 27.

— submicrostegium Kindb. 121.

— subrotundum n. v, 121.

— tectorum K. Müll. 27.

— versisporum Bom. 120.

— zonatiforme Kindb. 121.

Buellia 22.

— amblyogona Müll. Arg. 22.

— macrosporioides Müll. Arg. 22.

Bulbochaete 9.

Bumilleria 131.

— exilis Klebs 131.

Caeoma 113.

Calamites 59.

Calicium 107, 125.

— obconicum Müll. Arg. 51.

— Wilsoni Müll. Arg. 51.

Callithamnion 7.

Callophyllis 7.

— crispata Okam. 155.

Callopisma cerinum n. v. 22.

Calocera 31.

Calonectria verrucosa Pat. 14.

Caloplaca perfida Malme 22.

Calosphaeria 19, 49, 50, 126, 147.

— Kriegeriana Niessl 143.

Calothrix 30, 102.

Calymperes 25.

Campanella Büttneri P. Henn. 13.

Camptothecium 141.

— aureolum Kindb. 26.

— leucodontoides Kindb. 26.

Campylaephora 7.

Campylium uninervium K. Müll. 27.

Campylopus 55.

— catumbensis Broth. 54.

— Moseni Broth. 54.

— subarenicolus K. Müll. 54.

Cantharellus 60.

Capnodiastrum andinum Pat. 14.

Capnodium 21.

— Coffeae n. v. 14.

— cassum Pat. 14.

— Lygodesmiae EIl. et Ev. 12.

— melioloides Pat. 14.

Carlia 114.

Carpacanthus 5.

Carpodermia 5.

Carpoglossum 134.

Carpophyllum 5, 135.

Carteria 48.

Catharinea gracilis K. Müll. 27.

— Moseni Broth. 54.

— rhystophylla K. Müll. 27.

Caulerpa Bartoni Murr. 71.

Cenangella abietina EIl. et Ev. 12.

Cenangium 93.

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Inhalt.

Cenangium australe Pat. 14.

— biparasiticum Pat. 14.

— conglobatum EIl. et Ev. 12.

Centroceras 30.

Cephalosporium asperum March. 14.

— oxysporum March. 14.

Cephalozia 141.

Ceramium 9.

— japonicum Okam. 135.

— paniculatum Okam. 135.

Cerasterias 9,

Ceratiomyxa 15.

Ceratodon Columbiae Kindb. 56.

— sinensis K. Müll. 27.

Ceratostoma 138. ;

— albomaculans EIl. et Ev. 12.

— melaspermum ElIl. et Ev. 12.

Ceratostomella 19, 31, 79.

Cercospora 24, 31, 60, 76, 93, 119, 126.

— Grindeliae EIl. et Ev. 12.

— hibiscina EIl. et Ev. 12.

— Jochromatis Pat. 14.

— Piperis Pat. 14.

— stomatica EII, et Ev. 12.

Cercosporella 60.

— Baccharidis EIl, et Ev. 12.

— nivea EIl. et Ev. 12.

Chaetomium Montemartini Cav. 125.

Chaetosphaeria 19.

Chalara 23.

Champia 72.

Chantransia 9.

Chara 65.

Chiodecton rufescens Wain. 117.

— violaceum J. Müll. 139,

Chlamydomonas 71.

— media Klebs 131.

— pertusa Chod. 105.

— stellata Chod. 105.

Chlanidophora 5.

Chlanidote 5.

Chlorosiphon 6.

Chlorosplenium

Dearn. 12.

Chlorotylium 71.

Chnoospora 6.

Choanephora Simsoni Cunn. 110.

Choiromyces 114, 138.

Chondria 30, 106. "

Chondrioderma 2, 100.

— quitense Pat. 14.

striisporum EIl. et

‘ Chondrus elatus Holmes 108.

— ocellatus Holmes 103.

omophyton 6.

ysomyxa 31, 126.

= "hr ysophlyctis endobiotica Schilb.

Chrysymenia 30.

Ciboria 146.

— Liquidambaris EIl. et Ev. 12,

Cidaris 83.

Ciliaria 11.

Cincinnulus cordistipulus Steph, 57.

Cinclidium Macounii Kindb. 56.

Cladobotryum 53.

Cladochytrium 30, 31.

Hedwigia Ba. XXXV. 1890.

xvıi

Cladonia squamosa n. v. 51.

Cladophora 30, 91.

Cladosporium 23, 24, 32, 84, 85, 87.

— aromaticum EIl. et Ev. 12.

— Idesiae Bres, 61, 62.

Cladothrix 67.

Clasmotodon 26.

Clathrina aggregata n. v. 51.

Clathrodes 2.

Clathrus 137.

— camerunensis n. v. 13.

(laudopus camerunensis P, Henn. 13.

Clavaria 60.

— Sydowii Bres. 60, 61.

Claviceps 47, 98.

Climacium 121, 141.

Clitocybe 31.

Clitopilus togoensis P. Henn. 13.

Clonothrix fusca Roze 139.

Closterium lunula n. v, 4.

— Pritchardianum n. v. 4.

— pseudospirotaenium Lemm. 41,

Closterosporium 126.

Coccocarpia pellita n. v. 51.

Coccophacidium 126.

Coccophora 7, 134.

Codiolum 91.

Codium 91.

— cylindricum Holmes 103.

— divaricatum Holmes 103.

Coelastrum 9.

— Morus West et West 104.

Coelocladia 6.

Coelosphaerium confertum West et

West 104.

Coenogonium germanicum Glück 115.

— ornatum Müll. Arg. 51.

Cohnidonum 67.

Colaconema Bonnemaisoniae Batt. 39.

— Chylocladiae Batt. 39,

— reticulatum Batt. 39.

Coleochaete 10.

Coleosporium 18, 48, 49, 126.

Coleroa 76.

Colletotrichum 76, 93.

Collybia 79, 125.

— arborescens P. Henn. 13,

— microscopica Peck 14.

— Zenkeri P. Henn. 13.

Compsopogon 6.

Conferva 116, 131.

— glacialis n. v. 40.

Coniosporium 31.

Coniothyrium 61.

— olympicum All. 61.

Conomitrium tenerrimum K. Müll. 27.

Contarinia 5, 135. Be

Coprinus 126. K

— arenarius Pat. 5.

— ebulbosus Peck 15.

— laniger Peck 15.

Corallomyces elegans n. v. 12,

Cordyceps 114, 148.

— Cusu Pat. 14.

Coremium glaucum n. v. 14.

Corticium 18, 31, 60.

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h : a Eh In and PER BE le nal Din bl sale el le Be 5.» . Mutti... ih 23 ie EN. une

XVII Inhalt.

Corticium calothrix Pat. 45.

— gilvescens Bres. 60, 61.

Cortinarius 11.

Coryneum 32.

— camerunense P. Henn. 13.

— Pistaciae Pat. 45.

— Sydowianum All. 32, 33.

Coscinodon 25.

Cosmarium 8.

— bigibbum Schmidle 103.

Blyttii n. v. 108.

emarginato -strictum Lemm. 69.

granatum n. v. 103.

impressulum n. v. 41.

limnophilum Schmidle 41.

lobulatum West et West 104.

Meneghinii n. v. 8.

nasutum n. v. 41.

neapolitanum n. v. 108.

Netzerianum Schmidle 41.

FErEEEFEE|

mwangadanense West et West 104.

orthopunctulatum Schmidle 41.

Osteri Schmidle 41.

persianum n. v. 41.

polonicum n. v. 4.

quassilus n. v. 41.

sexuotatum n. v. 41.

speciosissimum Schmidle 41.

subvenustum West et West 104.

trochiscum West et West 104.

Crepidotus cinnabarinus Peck 15.

— togoensis P. Henn. 13.

Cribraria 66, 100.

Cronartium 31, 112.

— Gilgianum P. Henn. 13.

Crucigenia quadrata n. v. 41.

Cryphaea 26.

— Moseni Broth. 54.

Cryptonemia 11.

Cryptosphaeria 151.

Cucurbitaria Retamae Pat. 45.

— stenocarpa EIl. et Ev. 12.

Cudonia 82, 83.

Cudoniella 82, 83.

Cupressina alarıs K. Müll. 27.

— filaris K. Müll. 27.

— leptothalla K. Müll. 27.

— leucodontea K. Müll. 27.

— minuta K. Müll. 27.

— sinensi-mollusca K. Müll. 27.

— tereticaulis K. Müll. 27.

— ulophylla K. Müll. 27.

Curreyella 75.

Cyathicula 32.

Cyclomyces 80.

Cyclostomella 138.

Cylindrospermum 30.

— minutissimum Coll, 100.

Cylindrosporium 24, 60, 76, 85.

— Rhamni Ell. et. Ev. 12.

Cylindrothecium 141.

Cyphella disciformis P. Henn. 13.

— Erica Pat. 14.

— globosa Pat. 14.

— poriformis P. Henn. 13.

— rufo-brunnea P. Henn. 13.

BEREZZ

Cystoclonium 7.

Cystocoleus 116.

Cystophora 5, 134.

Cystophyllum 7, 134.

Cystopus 31, 111, 125.

Cystoseira 5.

Cystosira 134.

Cystospora 32.

— Elaeagni All. 61.

Daedalea 80.

Danaea 123.

Darluca 10.

Dasya 30, 106.

— notoensis Okam, 135.

— pulchra Okam. 135.

Dasycladus 91.

Dasyscypha 93, 146, 151.

Daubreeia 68.

Dawsonia 121.

— Beccarii Schl. et Geh. 121.

— gigantea K. Müll. 121.

— grandis Schl, et Geh. 121.

— papuana F. v. M. 121.

Delastria 115.

Delavayella serrata Steph. 57.

Delesseria radicosa Okam. 135.

Dematium 23—25. 85.

Dematophora 50.

Dermatea 61.

— Betulae Rehm 31, 32.

Desmarestia 30,

Desmithamnion 6.

Desmonema 30.

Desmotrichum 30.

Diaporthe 30, 31, 49, 125, 147, 148.

— AÄrctii n. v. 148.

— Polygoni Rehm 61.

Diatrype 92.

Diatrypella 19.

— Fraxini Ell. et Ev. 12.

Dichothrix 102.

Dicranella 25.

Dicranum algidum Kindb. 56.

— Demetrii Ren. et Card. 122.

— rectifolium K. Müll. 27.

— subfulvum Ren. et. Card, 122.

— thelinotum K. Müll. 27,

— trachyphyllum Ren. et Card. 122.

Dictydium 66.

Dietyoneuron 72,

Dictyosphaeria 30.

Dictyosporium 60.

Dictyota 5.

Diderma 2.

Didymella Ricini Ell. et Ev. 12.

Didymium 100.

Didymodon subruber Kindb. 56.

Didymosphaeria 31, 92.

— Celtidis El. et Ev. 12. .

Digena 30.

Dilophia 5.

Dimorphococcus 9.

Diphyscium 121, 122.

Diplocarpa 72.

Diplodia 61.

— celastrina EIl. et Ev. 12.

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Inhalt, XIX

Diplodia cocoicola P. Henn. 13.

— officinalis EI. et Ev. 12.

— Umbellulariae ElIl. et Ev. 12,

— coloradensis EIl. et Ev. 19.

Discosia 19.

Dispira americana Thaxt. 16.

Distichium papillosum K. Müll. 27.

Distichophyllum densirete Broth. 54.

Ditangium minutum Pat. 14.

Ditopella 61.

Doassansia 30, 9.

— intermedia Morot 17.

— Rhinanthi Lagh. 31.

Doodya 123.

Dothichiza 31.

Dothidea 60.

Dothidella 12.

Dothiora 126.

Dothiorella 61.

— Crataegi EIl. et Ev. 12

— fraxinicola EI. et Ev. 19.

Drepanocladus filicalyx K. Müll. 27.

— sinensi-uncinatus K. Müll. 27.

Drepanophyllaria elegantifolia K. Müll.

27.

nivicalyx K. Müll. 27.

Drummondia canadensis Kindb. 56.

— rubiginosa K. Müll. 27.

— sinensis K. Müll. 27.

Dryodon 4.

Dryopteris 142.

Dumontia 135.

Duplicaria acuminata EIl. et Ev. 12,

Durvillaea 5, 134.

Dysphinctium parvulum n. v. 41.

— sparseseptatum Schmidle 41.

— speciosum n. v. 41.

Eccilia camerunensis P. Henn. 13.

— Zenkeri P. Henn. 13.

Ecklonia 7, 134.

Echinella 75.

Echinobotryum pulvinatum March. 14.

Ectocarpidium 6.

Ectocarpus 6, 30, 71, 105, 135.

Ectoclinium kowiense Holmes 103.

Klaphomyces 60, 138.

Encalypta 25.

— breviseta K. Müll. 27.

Encoelia 31.

Endocladia 30.

Endoderma 9.

Endogone 138.

Enotia 8.

Enteridium 66.

Enteromorpha 40.

— ramosa Boye 39.

Entodesmis 6.

Entodesmium 30.

Entodon 121.

— amblyophyllus K. Müll. 27.

— Moseni Broth. 54.

— pseudoorthocarpus K. Müll. 97.

— schensianus K. Müll. 27.

Entonema 6.

Entophysalis 91.

Entorrhiza Solani Fautr, 16.

Entosthodon rivalis Geh. 122.

— Schinzii Geh. 122.

— sinensis K. Müll, 27.

Entyloma 17, 30. 126.

— Bellidis Krieg. 92, 145.

— Brefeldi Krieg. 92, 145.

Epichlo& 92, 93.

= Oplismeni P. Henn. 12,

Epicladia 91.

— cruciata Collins 40.

Epithemia 9, 70.

Equisetum 2, 58, 90, 123—2.

Erinella 32,

— viridula Pat. 14.

Erioderma physcioides Wain. 117.

Erysiphe 110, 125, 126, 150.

Euastrum 8.

— ansatum n. v. 108.

— Boldtii Schmidle 4.

— hexagonum West et West 104.

— subcuneatum Schmidle 4.

kuglena 15, 16, 133.

Eurhynchium acutifolium Kindb. 26.

— Bryhnii Kindb. 121.

— Macounii Kindb. 26.

— protractum K. Müll. 27.

— pseudo-velutinoides Kindb. 26.

— subcaespitosum Kindb. 26.

— subspeciosum K. Müll. 27.

— ticinense Kindb. 27.

Eurotiopsis 21.

Eurotium 131, 150.

— semiimmersum March. 13.

Eustichia Brotheri Besch. 54.

Eutypella 147.

— alpina EIl. et Ev. 12.

— herbicola EIl. et Ev. 12.

Exidia 19.

— Benieri Pat. 45.

Exoascus 19, 20, 31, 82, 93, 125, 147.

Exobasidium 80, 137.

Fabraea 30, 126.

Favolaschia bibundensis P. Henn. 13.

— Friesiana P. Henn. 13.

— lateritia P. Henn. 13.

Favolus 80.

Fissidens acicularis K. Müll. 54.

— adiantoides n. v. 27.

— capillisetus Broth. 54.

— catumbensis Broth. 54.

— crenatulus K. Müll. 54.

— decipiens n. v. 122.

— luteo-limbatus Broth. 54.

— obsoleto-marginatus K. Müll. 27.

— occultus Broth. 54,

— oediloma K. Müll, 54.

— parexilis Broth. 54.

paulensis Broth. 54.

protracticaulis Broth. 54.

— Regnellii Broth. 54.

— sinensi-bryoides K. Müll. 27.

— substissotheca Broth. 54.

Flammula 60.

— decurrens Peck 15.

— subsapinea P. Henn. 13.

Floccomutinus Zenkeri P. Henn. 13.

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Fomes 4.

— alboluteus EIl. et Ev. 12.

— ferreus n. v. 13.

— minutulus P. Henn. 13.

Fontinalis 27, 141.

— dalecarlica n. v..120.

— Dixoni Card; 120.

401088 Cärd, 120.

— Mac Millanı Card. 120.

— missourica Card. 120.

= Hatule Card. 120:

_ aghornei Gard.:120.

Fracchiaea 125.

Frullania 57.

— Delavayi Steph. 57.

— muscicola Steph. 57.

— rotundistipula Steph. 57.

— yunnanensis Steph. 57.

Fucus 5, 134.

Fumago 24, 25.

Funaria sphaerocarpa K. Müll. 54.

Fusarium 25, 88, 118.

— acuminatum ElIl. et Ev. 12.

— camerunense P. Henn. 13.

— coffeicola P. Henn. 13.

—— wse Pat. 14.

— Nectriae Turraeae P. Henn: 18:

— Seemenianum P. Henn. 98.

Fusicladium 52, 93.

— Betulae Aderh. 52.

Fusicoccum quercinum EIl. et Ev. 12.

Fusidium violaceum Pat. 14.

Fusisporium 24.

Gaillardiella pezizoides Pat. 14.

Galactinia Lefebvrei Pat. 45.

— tunetana Pat. 45.

Galaxaura 30.

Ganoderma 11.

== Bici Pat. 4b,

Gelidium 30, 92.

Genea 138.

Geoglossum 82, 83.

Geopyxis 126.

Georgia 26, SB.

Geothallus tuberosus Campb. 55.

Gibbera camerunensis P. Henn. 12.

Gibberella effusa Rehm 31, 32.

Giffordia 6.

Gigartina 7, 30.

Gleichenia retroflexa Bomm., 142.

(Glenodinium 41.

Gliocladium macropodinum March. 14.

Gloeocapsa 91.

Gloeocystis vesiculosa n. v. 41.

Gloeopeziza Zukalii Rehm 147.

Gloeosporium 60, 61, 92, 93, 126.

— amygdalinum Brizi 85.

— castanicolum EIl. et Ev. 12.

— inconspicuum Cav. 126.

— Msrtilli All. 140.

— Sorauerianum All. 23.

— taxicolum All. 32, 34.

Gloeothamnia 6.

Gloiothamnion 7.

Gloeothece Baileyana Schmidle 108.

Gloiopeltis 7.

Inhalt.

Gloiotrichia 43.

Glossophora 5.

Glossopteris 91, 143.

— coriacea Holmes 103.

Gnetopsis esnostensis B. Ren. 124.

Gnomonia 92, 126, 149.

Gnomoniella 125.

Gonapodya 111.

Gracilaria 7.

— Chorda Holmes 103.

— flexuosa Holmes 108.

Grandinia 18.

— fuscolutea Elli: et-Ev..12.

— granulosa n. v. 14.

Graphina alba J. Müll. 139.

— crassa !: Müll. 139.

— pachypleura J. Müll. 139.

— rhabdocarpa J. Müll. 139.

— tuberculifera J. Müll. 139.

Graphis albida Wain. 117.

— flavicans J. Müll. 139.

— gomphospora ]J. Müll. 139.

— lecanorina J. Müll. 139.

— rosea Wain, 117.

— turgidula J. Müll. 139.

Graphium stercorarium March. 14.

Grateloupia acuminata Holmes 13.

— acutiuscula Grun. 108.

— divaricata Okam. 11.

— elliptica Holmes 108.

— flabellata Holmes 103.

— furcata Holmes 108.

_ gelatinosa Grun. 103.

— ıimbricata Holmes 103.

— Ohkuboana Holmes 103.

— Wattii Holmes 103.

Griffithsia 106.

Grimmia Alfredii Brown 54.

— alpina Kindb. 56.

— aquatica Brown 54.

arctophila Kindb. 56.

argentea Brown 54.

Austini Kindb. 56.

Belli Brown 54.

Cockaynei Brown 54.

cyathiflormis Brown 54.

diminuta Brown 54.

dimorphula K. Müll. 27.

filicaulis K. Müll. 27.

finitima Brown 54.

flexifolia Brown 54.

gracilis Brown 54.

kansuana K. Müll. 27.

Laingii Brown 54.

minime- perichaetalis Brown 54.

Novae -Zealandiae Brown 54.

obovata Brown 54.

ortholoma Kindb. 56.

Petriei Brown 54.

procera Kindb. 56.

pusilla Brown 54.

rotunda Brown 54.

Scarelli Brown 54.

Stevensii Brown 54.

subtergestina K. Müll. 27.

tenax K. Müll, 27.

EERrFEREI I TIERE BEZ I I

Inhalt. XXI

Grimmia trichophylla n. v. 54.

— turbinata Brown 54.

— velutina Kindb. 56.

— versabilis Brown 54.

— Webbi Brown 54.

— Wrightii Brown 54.

Guepinia camerunensis P. Henn. 13.

Guepiniopsis agaricinus Pat. 14.

— andinus Pat. 14.

Gyalecta vincentina Wain. 117.

Gymnodinium 41.

Gymnogongrus 7, 11.

— divaricatus Holmes 103.

— furcellatus n. v. 108.

Gymnosorus 5.

Gymnosporangium 93, 137.

Gymnostomum calcareum n. v. 122.

Gyromitra 82, 83, 126.

Gyrophana janthinospora Pat. 45.

Haematococcus 30.

Haematostagon 106.

Hainesia 61.

Halicoryne 42.

Halicystis 106.

Halidrys 134.

Halimeda 30, 91, 105.

Haliseris 5.

— undulata Holmes 103.

Halochloa 5.

Hariotina 9.

Hecistopteris 88.

Hedwigia microcyathea K. Müll. 54.

Helicodontium complanatum Broth. 54.

Helminthocladia 43.

Helotium 32, 61.

— aurantiacum P. Henn. 12.

— camerunense P. Henn. 12.

— carpinicolum Rehm 146.

— spathicola P. Henn. 12.

Helvella 11, 82, 83.

Hemitelia microphylla Colenso 58.

Heribaudiella arvernensis Gom. 133.

Herpotrichia 151.

— purpurea EIl. et Ev. 12.

Herpocladium leptopteris K. Müll. 27.

— macropilum K. Müll. 27.

Heterangium 91.

Heterochlamys Chusqueae Pat. 14.

Heterocladium 141.

Heterosphaeria 92.

Heterosporium 61.

— Allü n. v. 14.

— gracile n. v. 45.

Heydenia fungicola Peck 15.

Hexagonia 80.

Hildenbrandtia 44.

Himanthalia 5, 134.

Hirneola 19.

Holmgrenia 121.

Homalothecium 141.

Homoeostrichus 5.

Homostegia coscinodisca Ell. et Ev. 12.

Hookeria chloroleuca Lindb. 54.

— Entodontella K. le 54

— glareosa Broth.

— irrorata Broth. Tr

Hookeria limosa Broth. 54.

— longifrons K. Müll. 54.

— mollicula Broth. 54.

— Moseni Broth. 54.

— perpallida Broth. 54.

— saprophila K. Müll. 54.

— spurio-pallida K. Müll. 54.

Hormidium 131.

Hormiscia Hieronymi Lemm. 41.

— zonata n. v. 40.

Hormodendron 24, 25, 32.

Hormophysa 134.

Hormosira 134.

Humaria 32.

— leporum n. v. 13.

Hyalotheca dissiliens n. v. 41.

Hydnobolites 138.

Hydnotrya 138.

Hydnum 31, 61.

— Dusenii P. Henn. 13.

Ilydrocoleum 102.

Hydrodictyon 130.

Hydrurites 6.

Hydrurus 6.

Hygrophorus sphaerosporus Peck 14.

Hylocomium Neckerella K. Müll. 27.

Hymenochaete 18.

Hymenophyllum Durandi Christ 142.

Hyophila laetevirens Broth. 54.

— Moseni Broth. 54.

Hypholoma cutifracta Peck 15.

Hypnea 7, 92.

— Saidana Holmes 103.

Hypnum 122.

— chrysophyllum n. v. 28.

— compridense K. Müll. 54.

— filiforme Kindb. 27.

— implexum Ren. et Card. 122.

— julaceum Broth. 54.

— microreptile Kindb. 27.

— molluscoides Kindb. 26.

— orbiculari-cordatum Ren. et Card.28.

— pseudo-complexum Kindb. 26.

— reptiliforme Kindb. 27.

— subeomplexum Kindb. 27.

— subeugyrium Ren. et Card. 122.

— subsecundum Kindb. 27.

Hypochnus 18, 125.

— capnoides Bres. 61, #2.

Hypocopra 125, 138.

Hypocrea 31.

— Euphorbiae Pat. 14.

Hypoderma 31.

Hypospila 60, 61.

Hypoxylon 31.

— bambusicolum Pat. 14.

— californicum EIl. et Ev. 12.

— Eriodendri P. Henn. 12.

Hysteriineae, Gattungsübersicht 82.

Hysterographium Artemisiae Pat. 45.

Hysterostomella 147.

Jania 30.

Imbricaria prolixa n. v. 116.

Inocybe radiata Peck 15.

Irpex 80.

Isactis 91.

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e: - ve B A

XII Inhalt.

Isoetes 28, 58, 124, 141.

— Brochoni Motel. 29.

Isopterygium longisetum Broth. 54.

Isothecium 141.

— brachycladon Kindb. 26.

— Holtii Kindb. 26.

— Howei Kindb. 26.

— obtusatulum Kindb. 26.

Jungermannia 55, 58, 89.

— erectifolia Steph. 57.

— reticulato -papillata Steph. 57.

Kalchbrennera Tuckii n. v. 13.

Karschia fulvodisca Pat. 14.

Kretschmaria sessilis Pat. 14.

Laccaria 74.

Lachnea 30, 46, 135, 146.

— Jungneri P. Henn. 12.

— stercorea n, v. 32.

Lachnocladium Dusenii P. Henn. 13.

— quangense P, Henn. 13.

>= "strietum P. Henn.:12.

Lachnodochium candidum March.

14.

Lactarius 75.

Laestadia 9.

— Taversi Cav. 125.

Laminaria 6.

Landsbergia 134.

Lanzia 12.

Lasiobolus 125.

Lasiodiplodia tubericola EII. et. Ev. 52.

Laurencia 7, 80, 106.

Leangium 2.

Leathesia 30.

Lecania chlaronoides Müll. Arg. 22.

— solenospora n. v. 22.

— subsquamosa Müll. Arg. 22.

Lecanora albellaria Müll. Arg. 22.

— antillarum Wain. 117.

— atra n, v, 2.

— deplanans Nyl. 139.

— flavido-fusca Müll. Arg. 22.

— Harmandi Hue 116.

— Knightiana Müll. Arg. 22.

— melacarpella Müll. Arg. 22.

— proximella Nyl. 115.

— redimita Stizenb. 116.

— stramineo-albida Wain. 117.

— subfusca n. v. 22.

— subumbrina Müll. Arg. 22.

Lecidea amaura Wain. 117.

— andita n. v. 117.

— arthoniopsis Wain. 117.

— aspidula n. v. 22.

— chlarodes Wain. 117.

— dominicana Wain. 117.

— ElIliotii Wain. 117.

enalliza n. v. 22.

ferax n, v. 22.

insulana Müll. Arg. 22.

mollisiaeformis Wain. 117.

nana Wain. 117.

nesophila Müll, 2 22.

Nuttallii Calk. et Nyl. 139.

ochrothelia Wain. 117.

phaeopsis Wain. 117.

FEER

Lecidea rubicundula Wain. 117.

— solenospora Müll. Arg. 22.

— subpilosa Wain. 117.

— variabilis Wain. 117.

— virginiensis Calk. et Nyl. 139.

Leersia 25.

Lemanea 6, 109.

Lentinus 18.

— crateriformis P. Henn. 13.

Lenzites 79.

Leotia 88, 83, 92.

Lepidopilum Moseni Broth. 54.

Lepidozia hokinensis Steph. 57.

— macrocalyx Steph. 57.

— robusta Steph. 57.

Lepiota 125.

— aureo-violacea P. Henn. 13.

— camerunensis P. Henn. 13.

Leptoglossum 83.

Leptomitus 111.

Leptonia viridula P. Henn. 13.

Leptosphaeria 19, 31, 61, 76, 92, 149.

— coneinna Ell. et. Ev. 12.

— consociata Rehm 149.

— lethalis EIl. et Ev. 12.

— stellata Pat. 14.

Leptostroma 61.

— Lycopi All. 32, 33.

Leptostromella 32.

Leptothyrium minimum P, Henn. 13.

Leptotrichum crispatissimum K. Müll. 27.

— pruinosum K, Müll. 27.

Lescuraea 141.

Leskea Cardoti Kindb. 26.

Lessonia 5.

Letendraea luteola EIl. et Ev. 12.

Letterstedtia japonica Holmes 108.

Leucobryum squarrosulum Broth. 54.

Leucodon denticulatus Broth. 27.

— exaltatus K. Müll. 27.

— flagelliformis K. Müll. 27.

— Giraldii K. Müll. 27.

— lasioides K. Müll. 27.

Leucoloma Moseni Broth. 54.

Leucomium Moseni Broth. 54.

Leucoporus rhizophilus Pat. 45.

Liagora 43.

Libellus 104.

Limnobium submolle Kindb. 27.

— pachycarpulum K. Müll. 27.

Lithoderma 10.

Lithosiphon 6.

Lithothamnion 4.

Lizonia Lagerheimii Rehm 149.

Lobophora 5.

Lobospira 5.

Lomaria Fauriei Christ 142.

Lophidium 12.

Lophiostoma 19, 147.

— clavisporum EI. et Ev. 12.

— dakotense EIl. et Ev. 12.

Lophodermium 93, 151.

Lycoperdon 44.

— alpigenum EIl. et Ev. 12.

Lycopodium polycephalum Colenso 58.

Lyginodendron 91.

Lygodium 59

Lyngbya 40, 102.

Macromitrium Giraldii K. Müll. 27.

— Moseni Broth. 54.

Macrosporium 32, 53, 118.

— Amaranti Peck 15.

— Asphodeli Pat. 45.

— Clematidis Peck 15.

— cucumerinum EIl. et Ev. 12.

— toruloides EI. et Ev. 12.

Madotheca eig Steph. 57.

— chinensis Steph.

— densifolia Steph. 37.

— nitens Steph. 57.

Magnusiella 19.

Marasmius 76.

— alliacioides P, Henn. 13.

— atroalbus P. Henn. 13.

— badius Peck 14.

— barombiensis P. Henn. 13.

— citrinus P. Henn. 13.

— conico-papillatus P. Henn. 13.

— Cyathula P. Henn. 13.

— discipes P. Henn. 13.

— discoideus P. Henn. 13.

— Dusenii P. Henn. 13.

— favoloides P. Henn. 13.

— Friesianus P. Henn. 13.

— Hungo P. Henn. 13.

— lilacino -striatus P. Henn. 13.

— minutulus P. Henn. 13.

— palmicola P. Henn. 13.

— paradoxus P. Henn. 13.

— rhodocephalus P. Henn. 13.

— roseolus P. Henn. 13.

— rufobrunneus P. Henn. 13.

— Sacchari Wakk. 8.

— Staudtii P. Henn. 13.

— subrhodocephalus P. Henn. 13.

— subtomentosus Peck 14.

— Zenkeri P. Henn. 13.

Marattia 90.

Marchantia 57.

— grossibarba Steph. 57.

Marginaria 134.

Marsonia 93.

— Rhamni ElIl. et Ev. 12.

— rubiginosa EI. et Ev. 12.

Marsupella Delavayi Steph. 57.

Massaria 30, 122.

Mazzantia 147.

Medusulina microcarpa J. Müll. 139.

Melampsora 31, 60, 92, 113, 114.

— Magnusiana Wagn. 114.

— Rostrupii Wagn. 114.

Melanconis 49, 126, 147.

Melanconium Alni Cooke et EI. 12.

— crinigerum EIl. et Ev. 12.

— hysteriopsis Pat. 45.

Melanomma 19, 31.

— boreale EIl. et Ev. 12.

— nigricans Ell. et Ev. 12.

— subcongruum EIl. et Ev. 12.

Melanopsamma 125.

— borealis EIl. et Ev. 12.

Melanospora octaedrica Pat. 45.

Inhalt. RUE

Meliola 12, 114.

— acanthopoda Pat. 14.

— pseudanastomosans Rehm 150.

Melobesia 30, 92.

Melogramma boreale EII. et Ev. 12.

Melosira 68.

Melostictis 6.

Merulius 79.

Mesogloea 91.

Mesotaenium Kramstei Lemm. 41.

Metasphaeria Funckiae Bres. 61, 62.

— quercina EIl. et Ev. 12.

Micrasterias 9.

— papillifera n. v. 41.

— rotata n. v. 69.

Microchaete 91.

Micrococcus 101.

— devonicus B. Ren. 101.

— flavidus Roze 68.

— Imperatoris Roze 68.

— mucivorus Roze 132.

— Nuclei Roze 68.

— pellucidus Roze 102.

Microcoleus 91.

Microglossum 82, 83.

Microsphaeria 31.

Microstroma 9.

Microthamnium Aptychella Broth. 54.

Microthelia minor Kernst. 116.

Microzonia 5.

Mitrula 31, 82, 83.

Mnium curvulum K. Müll. 27

— filicaule K. Müll. 27.

— incrassatum K. Müll. 27.

— rostellulatum K. Müll. 27.

— simplex Kindb. 56.

Monascus 138.

Mollisia 61.

— Asclepiadis EIl. et Ev. 12.

Monilia 125.

Monogramme 88.

Montagnites 45.

Morchella 44, 82, 83, 146.

Mougeotia 43.

Mucilago 2.

Mucor 45, 46, 131.

Müllerella 114.

Mutinus 111.

Mycena caesia Peck 14.

— gypsea n. v. 13.

Myelophycus 7.

Myrioblepharis paradoxa Thaxt. 16.

Myriodesma 134.

Myrionema intermedium Boye 39.

Mytilidion 147.

Myxosporium 60.

— diplodioides All. 60.

Naegeliella 6.

Naemaspora sclerotioides All. 32, 33.

Naevia 151.

Navicula 8, 42, 104.

Neckera 26.

— brevinervis Broth. 54.

— hymenodonta K. Müll. 54.

— polyclada K. Müll. 27.

Nectria 21, 30, 61, 110, 151.

ar mer

REIT

Nectria alba Pat. 14.

— Jungneri P. Henn. 12.

— pertusa Pat. 14.

— subinsubris Pat. 14.

— Turraeae P. Henn. 12.

Nemalion 106.

pulvinatum Grun. 108.

Nemalium 92.

Nemaspora 60.

Nematophyton Ortoni Penh. 69.

Neomeris 44.

Neottiospora 45.

Nephrodium Fauriei Christ 142.

— nigrovenium Christ 29.

Niptera Lagerheimii Pat. 14.

Nitella 129.

— Leibergi Allen 105.

— subspicata Allen 43.

— transilis Allen 105.

Nitophyllum 72.

Nodaria 6.

Nostoc 102.

Nostochopsis 30.

'Notheia 5, 134.

Notochlaena goyazensis Taub. 29.

Nucleophaga Amoebae Dang. 15.

Nummularia 126.

Ocellularia crispata J. Müll. 139.

— dilatata J. Müll. 139.

— elabens J. Müll. 139.

— Glaziovii J. Müll. 139.

Ochropsora 17.

Oedogonium 30, 91, 130,

-— ornatum Hirn. 40.

— undulatum n. v. 108.

Oedomyces 17.

Oidium 93, 110.

Ölpidiopsis appendiculata De Wild. 16.

— fibrillosa De Wild. 16.

— Zopfii De Wild. 16.

Olpidium Euglenae Dang. 16.

— rostratum De Wild. 16.

Ombrophila 92.

Omphalia 60.

— ndianensis P. Henn. 13.

— nigripes Pat. 14.

_ gr Pat, 14.

taudtii P. Henn. 13.

— subintegrella P. Henn. 13.

Oncophorus sinensis K. Müll, 27.

Onoclea 28.

Onygena 138.

— arietina P. Fisch. 138.

Oocystis Novae-Semliae n. v. 40,

— rotunda Schmidle 41.

= solitaria n, v. 133.

hen vi angulosa ]. Müll. 139.

— brachycarpoides Wain, 117.

— fertilis J. Müll. 139.

navicularis Wain. 117.

palmicola ]J. Müll. 139.

sexlocularis Wain. 117.

sordidescens Wain. 117.

ulcerata ]J. Müll. 139.

Ophiobolus 31, 60, 61, 149.

— Helianthi EIl. et Ev. 12.

ER RR En Ei

Inhalt.

Ophiocytium 68.

— cochleare n. v. 69.

Orbilia andina Pat. 14.

— serpentina Pat. 45.

Oreoweisia obtusata Kindb. 56.

Orthothecium 141.

Orthotrichum 57.

— acuminatum Brown 55.

acutifolium Brown 55.

anomalum Brown 55.

arctum Brown 5.

avonense Brown 55.

— benmorense Brown 55.

— breve Brown 55.

brevirostrum Brown 55.

brevisetum Brown 55.

calcareum Brown 55.

Clintonii Brown 55.

conicorostrum Brown 5.

curvatum Brown 55.

cyathiforme Brown 65.

cylindrothecum Brown 5.

Duthiei Venturi 57.

erectum Brown 55.

fimbriatum Brown 55.

tlexifolium Brown 55.

gracillimum Brown 55.

Holzingeri Ren. et Card. 2.

Hurunui Brown 55.

inaequale Brown 55.

lancifolium Brown 55.

latifolium Brown 55.

latorum Brown 55.

leiolecythis K. Müll. 27.

longithecum Brown 55.

Iyelloides Kindb. 56,

magnothecum Brown 55.

minimifolium Brown 55.

minutum Brown 55.

nudum Brown 55.

obesum Brown 55.

obliquum Brown 55.

obtusatum Brown 55.

ornatum Brown 55.

— parvithecum Brown 55.

— parvulum Brown 55.

praeperistomatum Vent. 122.

pseudopumilum Vent. 122.

pulvinatum Brown 55.

reflexum Brown 55.

robustum Brown 55.

A Sig Vent. 122.

ubulatum Brown 55.

— tortulosum Brown 55.

Oscillaria 73, 110.

Oscillatoria 30, 40, 68, 91.

Otidea 146.

Ovularia 31, 32, 60.

lotophaga EIl. et Ev. 12.

Pachydictyon d.

Pachyphloeus 138.

Pachysterigma 49.

Padina 5.

— arborescens Holmes 103.

Palmodactylon 9.

PERFEEEFIII EI FIEBPE FD HI 1993

Ophiobolus purpureus EII, et Ev. 12.

Papillaria Cardoti Broth. 54.

— helminthoclada K. Müll. 27.

— Moseni Broth. 54.

— paulensis Broth. 54

— perauriculata Broth, 54.

— Regnellii Broth. 54.

Pannaria aenea Müll. Arg. 51.

— myrioloba Müll. Arg. 51.

— nigrata Müll. Arg. 51.

— obscura Müll. Ars. 51.

— subimmixta n. v. 51.

Panus papillatus P. Henn. 13.

Parmelia 117.

— albata Müll. Arg. 51.

— blastica Wain. 117.

conspersa n. v. 51.

— crvptochlora Wain. 117.

dominicana Wain. 117.

enteroxantha Müll. Arg. 51.

myriotrema Müll. Arg. 51.

pertransita n. v. 51.

— physodes n. v. 51.

scabrosa Wain. 117.

— stramineo -nitens Zahlbr. 139,

— subconspersa n. v. 139.

— tenuirimis n. v. 51.

tiliacea n. v. 51.

— tropica Wain. 117.

Parodiella dothideoides Pat. 14.

Patellaria 146 147.

— Campbelliae Müll. Arg. 51.

Frenchiana Müll. Arg. 51.

— leptoplacella Müll. Arg. 51.

— livido -nigrans Müll. Arg. 51.

— melaclinoides Müll. Arg. 61.

— modestula Müll. Arg. 51.

— mycophila Müll. Arg. 51.

— rudis Müll. Arg. 51.

— superbula Müll. Arg. 51.

— verrucosa Müll. Arg. 51

Patellea hysterioides ElIl. et Ev. 12.

Pediastrum 9, 10, 68.

Pellaea membranacea Davenp. 123.

Pelvetia 91, 134.

Penicillium' 24.30.

Peniophora trachytricha Ell. et Ev.

Penium didymocarpon n. v. 41.

— Digitus n.v. 4.

Periconia felina March. 14.

— scyphophora March. 14.

Peridermium 18, 38, 48, 49, 83, 94,

111, 112, 137.

Peronospora 31, 125, 126.

— Giliae EIl. et Ev. 2.

Pertusaria albinea Müll. Arg. 22.

_ sn Mmblyogona Müll. Arg. 22.

concava Müll. Arg. 22.

— confluens Müll. Arg. 22.

elliptica Müll. Arg. 22.

irregularis Müll. Arg. 22.

leiocarpella Müll. Arg. 22.

leucostoma Müll, Arg. 22.

— leucothelia Müll. Arg. 22,

— leucoxantha Müll. SE: 22.

macra Müll. Arg. 22.

— microspora ] Müll. Arg. 22.

Inhalt.

Pertusarla paratropa Müll,

— plicatula Müll Arg. 22.

— rhodotropa Müll. Arg. 22.

— schizostomella Müll. Arg. 22.

— straminea Müll. Arg. 22.

— subrigida Müll. Arg. 22.

Pestalozzia 61, 76.

— Sydowiana Bres. 32.

— tumefaciens P. Henn. 85.

Pezicula 83.

Peziza 31. 44, 49.

Pezizella 146.

— Mikaniae Rehm 146.

Pezizincae, Gattungsübersicht 81.

Phacidiineae, Gattungsübersicht 81,

82.

Phacidium 60.

Phaeangella 75.

Phaeangium Lefebvrei Pat. 45.

Phaeocladia 6.

Phaeococcus 6.

Phaeocystis 6, 131.

Phaeodermatium 6.

Phaeographina flexuosa J. Müll. 139.

— limbata J. Müll. 139.

Phaeographis medusuliza J. Müll. 139.

— tremulans J. Müll. 139.

Phaeopezia splendens Pat. 14.

Phaeospora propria Arn. 83.

Phaeostroma 6.

Phakospora 79. ö

Pharcidia 60, 114.

Phialea 61, 126.

Philonotis angularis K. Müll. 27

— calcarea n. v. 98.

— Giraldii K. Müll. 27.

— tenella n. v. 122.

Phleospora californica EII. et Ev. 12.

Phoma 19, 32, 60, 61, 86.

— Armoraciae All. 61.

— canadensis All. 60.

— Gralinsogae All. 32, 33.

— Paeoniae All. 32, 33

Phormidium 30.

Phragmidium 59, 93.

Phycomyces Pirottianus Morini 46.

Phyllachora 32.

— graminis n. v. 13.

— nidulans n. v. 14.

— Plantaginis EIl. et Ev. 12.

Phyllactinia 60, 83.

Phyllospora 134.

Phyllosticta 32, 61.

— Allescheri Syd. 61.

amicta EIl. et Ev. 12.

— carpathica All. 61.

— castanicola EIl. et Ev. 12.

— Cotoneastri All. 61.

— cydoniicola All. 61.

— Ericae All. 61.

— fallax All, 61.

Hieracii All. 61.

— intermedia All. 61.

— Inulae All 61.

— Rudbeckiae EIlI. et Ev. 12.

— solitaris Ell. et Ev. 12.

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Arg. 22.

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XXVi Inhalt.

Phyllosticta Späthiana All. et Syd. 61.

— Trillii El. et Ev. 12,

Physalospora 31, 125.

— Corni EIl, et Ev. 12.

Physarum 100, 125.

— mucoroides Schilbers. 66.

Physcia crispa n. v. 51.

Physoderma 30.

— Allii Krieg. 144.

— Calami Krieg. 30, 144.

— Magnusiana Krieg. 144.

— Schroeteri Krieg 144.

Phytophthora 93, 118.

Picoa 138.

Pila 103.

Pilobolus 125. j

Pilocarpon leucoblepharum n. v. 117.

Pilonema 101.

Pilotrichella subpachygasterella Broth.

54.

Pistillaria Cytisi Pat. 45.

— Penniseti P. Henn. 13.

Pitophora 10.

Pitya 146.

Placodium brachylobum Müll. Arg. 51.

— diplacioides Wain. 117.

— imperfectum Müll, Arg. 51.

Placophora 7.

Plagiochila 120.

— chinensis Steph. 57.

— columbiana Evans 120.

— corticola Steph. 57.

— Delavayi Steph. 57.

— floridana Evans 120.

— Stableri Pears. 122.

— Sullivantii Gottsche 120.

— yunnanensis Steph. 57.

— zonata Steph. 57.

Plagiothecium denticulatum n. v. 119.

— Giraldii K. Müll. 27.

Plasmodiophora 31.

Plasmopara 93, 110, 126.

Platygrapha tlexuosa ]. Müll. 139.

— inferior J. Müll. 139.

— multilocularis J. Müll. 139.

Platygyrium 141.

Platylobium 134.

Platythalia 134.

Pleosphaeria quercina Pat. 45.

Pleospora 11, 86, 125.

— coloradensis Ell. et Ev. 12.

— juncicola EIl. et Ev. 12.

— maritima Rehm 149.

— Sydowiana All. 61.

Pleuridium 55.

Pleurocapsa 30.

Pleuroschisma alpina Steph. 57.

— bidentula Steph. 57.

— cordifolia Steph. 57.

Pleurotus 125.

— Chevallieri Pat. 45.

— submitis P. Henn. 13.

Pleuroziopsis 26.

Pleurozium 26, 57.

Plicaria 31, 151.

Plocamium ovicornis Okam. 135.

Plowrightia 125.

Pluteus stercorarius Peck 15.

Podospora arachnoidea Niessl 143.

Polycoccum thallicolum Arn. 83.

Polyopes polyideoides Okam. 11.

Polypodium costaricense Christ 142.

— cyclocolpon Christ 142.

— flagellare Christ 142.

— myriolepis Christ 142.

— rosulatum Christ 142.

— thyssanolepis n, v. 142.

Polyporus 17, 31, 47, 60, 80, 92, 93, 113,

125, 126.

— aureo-marginatus P. Henn. 13.

— evanido-squamulosus P. Henn. 13.

— pseudoradiatus Pat. 14.

— Sancti-Georgii Pat. 14.

Polysiphonia 7, 30, 106.

Polystictus 80.

— aratus.n, v. 13.

— atro-albus P, Henn. 13.

— ekunduensis P. Henn. 13.

— subflabellatum P. Henn. 13.

Polystigma 93.

— nigroviride Rehm 148.

Polytrichum microdendron K. Müll. 27.

— polythamnion K. Müll. 27.

— thelicarpon K. Müll. 27.

Polyzonia fissidentoides Holmes 108.

Poria 60, 61.

— Dusenii P. Henn. 13.

— tephra Pat. 14.

Porina dominicana Wain. 117.

— vincentina Wain. 117.

Poronia Doumetii Pat. 45.

Postelsia 30.

Pottia Ryani Phil. 56.

Prionitis 92,

Prionodon caldensis Broth. 54.

Prorocentrum ovoideum Lemm. 69.

Protococcus 10, 69.

Protomyces 138.

— Bellidis Krieg. 92, 144.

Protosiphon 130.

Prototremella 49.

PSathyrella Bartholomaei Peck 15.

— leucostigma Peck 15.

Pseudographis Volkensii P. Henn. 13.

Pseudoleskea 141.

— atrovirens n. v. 98.

— heterocladioides Kindb. 26.

— papillarioides K. Müll. 27.

Pseudopeziza 9.

Pseudopyrenula degenerans Wain. 117.

— endoxantha Wain. 117.

Pseudovalsa 19, 31.

Psilopezia 82, 83.

Psorotichia allobrogensis Hue 116.

— americana Wain. 117.

— Claudelii Hue 116.

Pterigynandrum 141.

Pteris 91, 125.

— mollis Christ 142.

Pterocaulon 135.

Pterogonium 141.

Pteromonas angulosa Chod. 108.

Inhalt.

Ptilophora Beckeri Holmes 103.

Ptychodium 141.

— affine Limpr. 141.

— deeipiens Limpr. 141.

— Pfundtneri Limpr. 141.

— tanguticum Broth. 27.

Ptychogaster Fici Pat. 45.

Puccinia 12°30731,485:99, 00 71.80),

92, 93, 110, 112, 113, 125, 126.

— Chretogastrae Lagh. 14.

— horrida Lagh. 14.

— Mutisiae Lagh. 14.

— Pitcairniae Lagh. 14.

— Polemonii Störm. 137.

— Schroeteriana Kleb. 48.

Pulvinaria 6.

Pustularia 126.

Pylaisia 141.

— entodontea K. Müll. 27. *

Pylaiella 91, 121.

Pyrenochaete Rivini All. 61.

Pyrenodesmia monacensis Leder. 83.

Pyrenopeziza 61, 146.

Pyrenula aggregans Wain. 117.

Pythium 15, 111.

Racomitrium Jenseni Kindb. 56.

— Palmeri Kindb. 56.

— tenuinerve Kindb. 56.

Radulum 18.

Ramalea cochleata Müll. Arg. 51.

Ramalina geniculata n. v. 51.

Ramularia 126.

— anserina All. 60.

— cercosporoides EII. et Ev. 12.

— circumfusa EI et Ev. 12.

— Rhei All. 32, 34.

Ravenelia Stuhlmanni P. Henn. 13.

Reinboldiella 7.

Rhabdonia 30, 106.

Rhabdospora 60, 61.

— Galeopsidis All. 60.

— Hypochaeridis All. 61.

Rhaphidostegium amnigenum Broth. 54.

— campicolum Broth, 54.

— cochleatum Broth. 54.

— subfulvum Broth. 54.

Rhipidium 110, 111.

Rhizidium Chaetophorae De Wild. 16.

Rhizina 82, 83.

Rhizobium mutabile Schneid. 31.

Rhizoclonium 30, 40.

Rhizoctonia 86.

Rhizophagus populneus Dang. 107.

Rhizophidium messanense Morini 46.

Rhizopus 61.

Rhizosolenia 42.

Rhodochaete 39.

Rhodochorton 7.

— parasiticum Batt. 102.

Rhopalodia 9.

— ascoidea ©. Müll. 9.

-— asymmetrica ©. Müll. 9.

— gracilis ©. Müll. 9.

— hirudiniformis ©. Müll. 9.

— impressa ©. Müll. 9.

— Stuhlmanii ©. Müll. 9.

XXVO

Rhopalodia uncinata ©. Müll. 9.

— vermicularis ©. Müll. 9.

Rhynchostegium 140, 141.

— Pirottae Brizi 141.

— romanum Brizi 141.

Rhyparobius 82, 92.

Rhytiphloea angusta Okam. 135.

Rhytisma 151.

Rinodina 83, 84, 116.

— difractella Müll. Arg. 22.

Rivularıa 91, 102.

Robergea 49, 50.

Rosellinia 19, 92, 125, 126.

— Chusqueae Pat. 14.

— elacicola P. Henn. 12,

— geasteroides EI. et Ev. 12.

— limoniispora EII. et Ev. 12.

— muriculata EI. et Ev. 12.

— radiciperda Mass. 50.

Russula 11.

Saccharomyces 23, 24, 61, 85, 118.

— apiculatus n. v. 24.

Saccobolus 82.

Sappinia pedata Dang. 99.

Saprolegnia 77.

Sapromyces 110, 111.

Sarcographa aurantiaca J. Müll. 139.

Sarcomenia 106.

Sarcophycus 5, 134.

Sargassum 4, 7, 92, 105, 135.

Scaberia 134.

Scapania gymnostomophila Kaalaas 53.

— parva Steph. 57.

— secunda Steph. 57.

Scenedesmus 43.

— costatus Schmidle 40.

— costatus n. v. 41.

Schisma chinense Steph. 57.

— Delavayi Steph. 57.

Schizaea 123, 124.

Schizogonium 6.

Schizophyllum 47, 80.

Schizosaccharomyces 23, 140.

Schizothrix 30, 102.

Schizoxylon andinum Pat. 14.

Schroetersiaster 79.

Schweinitzia 75.

Schwetschkea sinensis K.

Sciadium 68.

Sciania 92.

Scirrhia 126.

Scleroderma 126.

— pisiforme P. Henn. 13.

Scleroderris coerulea Pat. 14.

Sclerospora 30, 76.

Sclerotinia 38, 61, 115, 139, 151.

Scolecotrichum compressum All. 32, 34.

Scolopendrium 29, 90.

Scouleria 25.

Scytonema 30, 102.

Scytosiphon 7, 91.

Scytothalia 134.

Secotium decipiens Peck 15. ©

Seirococcus 134.

Selaginella 66, 90 14.

Scligeria tristichoides Kindb. 56,

Müll. 27.

XXVII

Septogloeum saliciperdum All. etTub.60.

Septoria 31, 32, 61, 126.

— Asplenii Ell, et Ev. 12.

coffeicola P. Henn. 13.

curvispora EIl. et Ev. 12.

Monimiae Pat. 14.

Paeoniae n. v. 32, 34.

Phytolaccae Pat. 14.

seminalis n. v. 32 34.

variegata EIl. et Ev. 12.

Setchellia 16.

Seynesia disciformis Pat. 14.

— rimosa Pat. 14.

Sorastrum 105.

Sordaria 125.

clavata Pat. 14.

elephantina P. Henn. 12.

Sorosporium 30.

Spathoglossum 5.

Spathularia 82, 83.

Spencerella australis Darbish. 106.

Spermothamnion 92.

Sphacelaria 91.

Sphacelotheca 78.

Sphaerella 61, 114.

laricina Hart. 21.

Nicotianae EIl. et Ev. 12.

vagans EIl. et Ev. 12.

Sphaeria 19.

Sphaerita 15.

Sphaerocarpus 120.

Sphaeroderma damnosum Sacc. 21.

Sphaerogonium 8.

Sphaeroplea 43.

Sphaeropsis 19, 60.

Sphaerosoma 92.

Sphaerospora 125.

Sphaerotheca 20, 93, 114.

Sphaerozyga cylindrica Lemm. 69.

Sphaerulina 30, 114, 115.

muscicola Pat. 4.

Sphagnum acutum Warnst. 28.

PRATER

angusti-limbatum Warnst. 28.

borneoense Warnst. 28.

costaricense Warnst. 28.

falcatulum n. v. 28.

flavicans Warnst. 28.

japonicum Warnst. 28.

irritans Warnst. 28.

Moorei Warnst. 28.

nitidum Warnst. 28.

recurviforme Warnst. 28.

Stuhlmannii Warnst. 28.

subacutifolium Schimp. 28.

subrecurvum Warnst. 28.

tenuifolium Warnst. 28.

turgescens Warnst. 28.

undulatum Warnst. 28.

Waghornei Warnst. 28,

Spirogyra 43, 69, 71, 88.

— Baileyi Schmidle 103.

daedalea n. v. 40.

kunsamoönsis Hirn. 43.

punctata n, v. 43.

sphaerospora Hirn. 43.

Spirophyton 68.

Inhalt.

Spirotaenia alpina Schmidle 41.

Splachnidium 5, 134.

Sporidesmium 84, 85.

— punctans EIl. et Ev. 12.

— Banın AI. 61.

Sporodinia 46.

Sporonema 60.

Sporormia 126.

Sporotrichum Araneorum Cav. 125.

Spumaria 2,

Staganospora 31.

Staurastrum amphidoxon n. v. 41.

— circulare Schmidle 41.

— dilatatum n. v. 108.

— gurguliense Schmidle 41.

— hystrix n. v. 41.

— lunatum n. v. 41.

— muricatiforme Schmidle 4.

— nephroideum West et West 104.

— sexangulare n. v. 108.

— sparse-aculeatum Schmidle 41.

— subdilatatum West et West 104.

— subpinnatum Schmidle 103.

— turgescens n. v. 8.

— vastum Schmidle 41.

Staurothele acarosporoides Wain. 117.

Stegastrum 6.

Stemphylium laxum EII. et Ev. 12.

— subradians EIl. et Ev. 12.

Stephensia 138.

Stereocaulon humile n. v. 51.

— ramosum n. v. 51.

Stereodon caldensis Broth. 54.

Stereum 18, 61.

— Sprucei n. v. 13.

Stichococcus 30, 69, 71.

Sticta damaecornifolla Wain. 117.

— flavissima n. v. 51.

— Mooreana Zahlbr. 139.

Stictina Mougeotiana n. v. 51.

— rigida Müll. Arg. 51.

Stictis corticioides Pat. 14.

— rubiacearum Pat. 14.

Stigeoclonium Askenasyi Schmidle 103.

Stigmatea 30,

Stigonema 8, 102.

Stilbomyces Berenice EIl. et Ev. 12.

Stilbospora 32.

Stilbum camerunense P. Henn. 13.

— Euphorbiae Pat. 14.

— Rimbachii Pat. 14.

Stoechospermum 5.

Streblonema 6.

— Buffhamiana Batt. 102.

— Codii Bart. 132.

Streblonemopsis 6.

Strepsithalia curvata Sauv. 43.

— Liagorae Sauv. 43.

Strigula 12.

Stropharia 113.

— caesifolia Peck 15.

Struthiopteris 91.

Stypopodium 5.

Stysanus 31.

Surirella 134.

Symphyocarpus 6.

IE sa N Ph a

Inhalt.

Symploca 71.

Syncerypta 6.

Synechococeus major n. v. 41.

Syrrhopodon anomalus Broth. 54.

— vaginans Broth. 54.

Tamariscella pyenothalla K. Müll. 27.

Taonia 5.

Tapesia 30,

Taphrina 19—21.

— acerina Eliass. 49.

Targionia 122.

Taxithelium glabratum Ren. et Card. 122.

Teichospora 138.

— minima Ell. et Ev. 12.

— nitida’Ell. et Ev. 12.

Teichosporella 138.

Terfezia 49, 114, 138.

— Boudieri n. v. 4.

— Hanotauxii Chat. 19.

— Pfeilii P. Henn. 12.

Tetmemorus levis n. v. 41.

Tetracladium 9.

Tetraedron 105.

Tetraplodon 121.

Thalloidima nitidum Müll. Arg. 51.

Thamnium miero-alopecurum Kindb. 26.

Thelebolus 82.

Thelenella Elliottii Wain. 117.

— scopularis Wain. 117.

— turgida Wain. 117.

Thelephora 18, 61, 9.

— subundulata Peck 15.

Theloschistes chrysophthalmus n. v. 51.

Thelotrema annulatum ]J. Müll. 139.

— Elliotii Wain. 117.

— excavatum Wain. 117.

— homopastoides Wain. 117.

— laevius Wain. 117.

— microglaenoides Wain. 117.

— praestans J. Müll. 139.

— schizostomum ]J. Müll. 139.

— vagum Wain. 117.

Thielaviopsis 76.

Thorea 6, 106:

Thuidium 88, 141.

— caldense Broth. 54.

— longicuspes Broth. 54.

— pseudo-tamarisci Limpr. 141.

Thyridium pallidum EI. et Ev. 12.

Tichothecium 114.

erilletia 31:78, 113:

— horrida Takah. 78.

Tirmania ovalispora Pat. 45.

Tolypothrix fasciculata Gom. 133.

— polymorpha Lemm. 69.

Tortula 57.

Torula 85.

Trachelomonas 41.

Trailliella intricata Batt. 39.

Trametes 61.

— andina Pat. 14.

— Ellisiana P. Henn. 13.

Trematodon acicularıs Kindb. 56.

Trematosphaeria 19.

— Schweinitzii Ell. et Ev. 19.

Tremella setulosa P. Henn. 13.

XXIX

Tremotylium Sprucei J. Müll. 139.

Trentepohlia 30.

— germanica Glück 116.

Trichia varia n. v. 14.

Trichoderma 45, 46.

Tricholoma 79.

— semivestitum Peck 14.

Trichomanes acutum Makino 142.

Trichosporium gossypinum Pat. 14.

— inflatum March. 14.

Trichosteleum dicranoides Broth. 54.

— flagelliferum Broth 54.

Trichostomum Crozalsi Phil. 56.

— indigens Ren. et Card. 122.

— lonchobasis K. Müll. 27.

— sulphuripes K. Müll. 27.

Triphragmium 111, 126.

Trochila Astragali Rehm 9.

Trochiscia Gutwinskii Schmidle 41.

Tubaria ptychophylla Pat. 45.

Tuber 138.

Tubercularia 32, 110.

Tuberculina 109.

Tubicaulis 59.

Tubifera 2.

Tubulina 2.

Tulostoma carneum Pat. 45.

— carneum n. v. 4.

Tuomeya 30.

Turbinaria 5, 135.

Typhula Asphodeli Pat. 45.

Tyrothrix 102,

Ulonema 6.

Ulopteryx 6.

Ulota crispula Ren. et Card. 122.

Ulothrix 30, 69, 131.

Uncinula 19, 76, 150.

Undaria 6, 7.

Underwoodia 83.

Uredo 47, 48, 76.

— Bomareae Lagh. 14.

— Cherimoniae Lagh. 14.

— Eucharidis Lagh. 14.

— Lentis Lagh. 14.

Urnula 4.

Urocystis 93.

Uromyces 30, 31, 48, 79, 80, 92, 126.

— Alchemillae alpinae E. Fisch 11.

— andinus Lagh. 14.

— Bidentis Lagh. 14.

— quitensis Lagh. 14.

— Verneriae Lagh. 14.

Usnea intercalaris n. v. 139.

Ustilaginoidea 47, 78.

Ustilago 30, 31, 38, 76, 78, 98, 125, 126.

Valsa 30, 31, 61, 126.

— germanica n. v. 47.

— leucopsis EIl. et Ev. 12.

Valsaria 31.

Valsonectria andina Pat. 14.

Vaucheria 40, 69, 91, 130.

— Schleicheri De Wild. 9.

— Walzi Roth. 105.

Venturia 5.

Vermicularia 19, 32, 61.

— Späthiana All. 61.

Verpa 82, 83.

Verrucaria prosperella Nyl. 115.

Vertebraria 91, 143.

Verticillium 125.

Vibrissea 82, 83.

Vittaria 88.

— lanceolata Christ 142.

Volvaria striatula Peck 15.

Volvox 102.

Webera 55, 122.

Weisia pusilla Kindb, 56.

bie rn

Inhalt.

Wiesnerella javanica Schiffn. 57.

Xanthidium alpinum Schmidle 4.

— armatum n. v. 41.

Xenocarpus 31.

Xiphophora 5, 134.

Xylaria nutans P. Henn, 13.

— verruculosa P. Henn. 12.

Zonaria D.

Zukalina 82.

Zygnema 43.

Zygodon crispatus Kindb. 56.

V. Sammlungen.

Allescher, A. und Schnabl, J. N.

Baenitz, €. Herbarium Europaeum.

Fungi Bavarici exsiccati. Cent. V 59.

Lief. 95—101 143.

Cavara, F. Fungi Longobardiae exsiccatae. Pug. V 125.

Collins, F., Holden, J. and Setchell, W. Phycotheca boreali-americana.

Fasc. III 30, IV 91.

Flora lusitanica exsiccata. Cent. XIV 30.

Jaczewski,Komarow undTranzschel. Fungi Rossiae exsiccati. Fasc. III 126.

Krieger, W. Fungi saxonici exsiccati.

neuer Arten 143.

Fasc. XXI 30, XXIII 92. Diagnosen

— Schädliche Pilze unserer Culturgewächse. Fasc. I 9.

Kryptogamae exsiccatae. Cent. II 125.

Rehm. Ascomycetes exsiccati. Fasc. XXIV 145.

Romell, L. Fungi exsiccati praesertim scandinavici. Cent. II 31.

— Fungi rariores exsiccati 31.

Roumegucre, C. Fungi exsiccati praecipue Gallici. Cent. LXX 92.

Sydow, P. Mycotheca marchica. Cent.

LIV 31, XLV 60.

VI. Personalnotizen.

Ascherson, P. 127.

Atkinson, G. F. 69.

Borzi 62.

Brefeld, ©. 127.

Briquet, J. 96.

Brotherus, V. F. 35.

Brunnthaler, ]J. 62.

Buffham, T. H. 9.

Buscalioni, A. N. 2.

Cavara, F. 9%.

Durand, E. ]. 63.

Geneau de Lamarliere 62,

Grevillius, J. 96.

Howe, M. A. 127.

Karsten, P. A. &.

Knoblauch, E. 126.

. Köhne, E. 96.

Kryptogamenflora von Brandenburg 96.

Mauricio, A. 126.

Möller, A. 63.

Müller, C. 96.

Müller, F. v. 127.

Müller, J. 35.

Müller, K. 151.

Noack, BR. 127.

Österhout, W. J. W. 127.

Oudemans, C. A. J. A. 62,

Prentiss, A, N. 68, 151.

Raciborski, M. 96.

Reinke, J. 35.

Renauld, F. 62.

Renault, B. 62.

Richard, J. 96.

Ritzema Bos 35.

Rothert, W. 151.

Rowlee, W. W. 63.

Saccardo, F. 35, 151.

Schenck, H. 96, 126.

Schiedermayer, K. B. 35.

Schiffner, V. 96, 126.

Solla 96.

Tognini, F. 127.

Treub, M. 96.

Underwood, L. 127.

Voglino, P. 62.

Vurllemin, P:::85;

Wiegand, K. M. 63.

Wilhelm, C. 127.

Woronin, M. 35.

Zimmermann, A. 35, 127.

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Druckfehlerberichtigung.

Pag. 187 Zeile 23 von oben lies Bot. Notis. 1853.

Pag. 188 Zeile 6 von unten lies Sablon statt Sablom,

Pag. 189 Zeile 3 von unten lies 1823 p. 114. ;

Pag. 193. Die Zeilen 6—17 von oben gehören zu der Anmerkung !) auf der- =

ER selben Seite. 4

Pag. (60) Zeile 10 von oben lies Hypospila statt Hypopsila.

Pag. (70) Zeile 16 von oben lies ©. Müller statt C. Müller.

Pag. (80) Zeile 17 von oben statt In setze Zu, statt L. setze C.

Pag. (101) Zeile 2 von unten lies Potato statt Posato. {

Pag. (109) Zeile 17 von unten lies Tuberculina statt Tubercularia. |

Pag. (125) letzte Zeile lies Araneorum statt Araucorum.

Pag. (126) Zeile 14 von unten lies Arthrinium statt Arthnirium.

| Begründet 1852 durch Dr. Rabenhorst |

€ als

| »Notizblatt für kryptogamische Studien.«

r as ee 3 ———

Ih. u

| Organ

j für |

| ||

Kryptogamenkunde,

| nebst |

Repertorium für kryptog. Literatur.

| Medıgırt

| von

Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von

| Paul Hennings und Dr. G. Lindau |

in Berlin. |

Band XXXV. = 1896. - 3 u Heft 1. =

Inhalt: W. Schmidle, Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. —

Jos. B. Jack, Ernst Stizenberger. — P. A. Karsten, Fragmenta myco-

logica XLIV (Anfang). — Repertorium No, 1. — Repertorium No. 7

- (Elenchus fungorum novorum etc.).

Hierzu Tafel I— III.

Dresden,

Druck und Verlag von C. Heinrich.

Erscheint in zweimonatlichen Heften.

Abonnement für den Jahrgang 12 Mark

IR. durch alle Buchhandlungen.

Ausgegeben am 26. Februar 1896.

An die Leser und Mitarbeiter der

„Hedwigia”.

Zusendungen und Anfragen redactioneller Art werden unter

der Adresse:

Prof. Dr. G. Hieronymus,

Berlin, Botanisches Museum, Grunewaldstrasse 6/7,

- mit der Aufschrift

„Für die Redaction der Hedwigia“

erbeten.

Um eine möglichst vollständige Aufzählung der krypto-

gamischen Literatur und kurze Inhaltsangabe der wichtigeren Arbeiten

zu ermöglichen, werden die Verfasser, sowie die Herausgeber der

wissenschaftlichen Zeitschriften höflichst im eigenen Interesse er-

sucht, die Redaction durch Zusendung der Arbeiten oder Angabe

der Titel baldmöglichst nach dem Erscheinen zu benachrichtigen;

desgleichen sind kurz gehaltene Selbstreferate über den wichtigsten

Inhalt sehr erwünscht.

In Rücksicht auf den Gesammtumfang der Zeitschrift sollen die

einzelnen Abhandlungen die Länge von 3 Bogen im Allgemeinen

nicht überschreiten, desgleichen die einer Abhandlung bei-

zugebenden Tafeln nicht mehr als zwei betragen. Die Original-

zeichnungen für die Tafeln sind im Format 13 x 21 cm mit mög-

lichster Ausnutzung des Raumes und in guter Ausführung zu liefern,

auch sind die Manuscripte nur auf einer Seite zu beschreiben.

Die Autoren erhalten auf Wunsch 25 Sonderabzüge kostenlos,

doch werden solche in beliebiger Anzahl zum Selbstkostenpreis

geliefert.

C. Heinrich's Verlag.

Untersuchungen über Thorea ramo-

sissima Bory.

Von W. Schmidle, Mannheim.

(Mit Tafel T—II.)

Die im Folgenden mitgetheilten Beobachtungen bezwecken vor-

züglich, der Unsicherheit der Stellung von Thorea im Algensysteme

ein Ende zu bereiten. Wie sehr dieselbe schon in den verschiedenen

Abtheilungen herumgewandert ist, hat Schmitz!) in ausführlicherer

und erschöpfenderer Weise geschildert, als mir es möglich wäre.

Er selbst stellte sie zu den Phaeophyceen, kam aber später”) von

dieser Ansicht zurück und hielt es am besten, für sie eine besondere

kleine, zwischen die Florideen und Phaeophyceen zu stellende Ab-

theilung zu errichten. Im Gegensatze zu ihm hatte Moebius ?) sie

zu den Florideen gerechnet. Er stützte sich dabei nicht nur auf die

von ihm constatirte monopodiale Verzweigungsweise unserer Alge,

sondern auch auf die Farbe der lebendigen Pflanze, die Beschaffen-

heit des Zellinhaltes und der Zellmembran und endlich auf die

zwischen den einzelnen Fadenzellen vorhandene Plasmaverbindung.

Diese letztere stellte jedoch Schmitz!) in Abrede, ebenso hatte er

eine andere Auffassung vom Zellinhalte, dem Aussehen des larbstoffes

legte er keinen systematischen Werth bei, und statt der monopodialen

Verzweigungsweise will er ausschliesslich eine bei den Florideen nir-

gends zu constatirende sympodiale beobachtet haben.

Ich richtete deshalb meine Aufmerksamkeit einmal vorzüglich

auf den letztgenannten Differenzpunkt, untersuchte ferner den wasser-

') Schmitz: Die systematische Stellung der Gattung Thorca. Berichte d.

D. bot. Gesellschaft 1892, pag. 115 — 141.

?) Schmitz: Kleinere Beiträge zur Kenntniss der Florideen V. Nuova

Notarisia 1894, pag. 705. Darin sind auch die neuerdings erschienenen Arbeiten

über Thorea, die jedoch nur ihre Verbreitung betreffen, citirt.

3) Moebius: Beiträge zur Kenntniss der Gattung Thorea. Berichte d. D.

bot. Gesellschaft 1891, pag. 333 —343 und:

Moebius: Bemerkungen über die systematische Stellung von Thorea Bory.

Berichte d. D. bot. Gesellschaft 1892, pag. 266 — 270.

#) Schmitz 1892 1. c. pag. 136,

Hedwigia Ba. XXAV, 1890. 1

2 W. Schmidle.

löslichen Farbstoff auf seine Zugehörigkeit zu den Florideen- oder

Phaeophyceenfarbstoffen ?), und durch die Untersuchung des bis jetzt

noch vollständig unbekannten Haftorganes*) gelangte ich zur Beobach-

tung derinteressanten Entwickelungsgeschichte unserer Alge. Alle diese

Untersuchungen wiesen mit Sicherheit darauf hin, dass Thorea unter

die Florideen und zwar in die Nähe von Batrachospermum zu stellen ist.

Material stand mir anfänglich in reichlichem Maasse zur Ver-

fügung. F. Förster, der schon im Jahre 1891 Thorea in einigen

Exemplaren an einem Schiffsbocke im Rhein bei Mannheim und

bald darauf im Neckar bei Ladenburg entdeckt hatte,?) fand dieselbe

im Mai 1892 in reichlicher Menge im Neckar bei der Feudenheimer

Fährte. Sie ist daselbst ausschliesslich an Geröllstücken rothen Sand-

steins an stark fliessenden Stellen tief am Grunde des Bettes an-

gewachsen, so dass sie nur bei niederem Wasserstande sichtbar und

gut erreichbar ist. F. Förster hatte damals schon einige der unten

beschriebenen Reactionen am Farbstoffe vorgenommen (siehe Anhang),

auch hatten wir zusammen einige Absorptionsstreifen des Spectrums

gesehen, doch war der Apparat zu schlecht, um etwas Genaues über

ihre Lage im Spectrum aussagen zu können. Im Winter 1892—93

trat Hochwasser ein, unsere Alge verschwand von da ab und es war

trotz des ausserordentlich niedrigen Wasserstandes im Sommer 1893

an den vorher so reich besetzten Stellen auch keine Spur mehr

von ihr zu sehen. Dasselbe geschah 1894. Erst im August dieses

Jahres (1895) erblickte ich sie genau an den alten Standorten wieder

in ebenso reichlichen Mengen. Dieses plötzliche massenhafte Auf-

treten und plötzliche Verschwinden für längere Zeit lässt wohl schon

darauf schliessen, dass unsere Alge während der Zwischenzeit in

irgend einer unscheinbaren Gestalt am Fundorte vegetirte. Es ge-

schieht dieses in der von mir seitdem gefundenen Chantransia- und

Prothalliumform.

Die Pflanze bildet im lebenden Zustande lange, fluthende, an-

gewachsene Büschel, dessen einzelne dicht behaarte Sprosse oder

Stämmchen durch die Gewalt des Stromes in meist schlängelnder Be-

wegung sich befinden. In ihrem Verlaufe sind sie reichlich verzweigt, so

dass die Büschel im Wasser oft eine Breite von 2—3 cm erreichen bei

einer Länge bis zu einem Meter. In ihrem untersten Theile bestehen sie

jedoch nur aus einer geringen Zahl (1—5) einzelner Stämmchen, die

kurz vor der Anwachsstelle auf dem Steine vollständig unbehaart

werden und dort miteinander scheinbar verschmelzen, so dass sie

5) Eine solche Untersuchung hat nach Schmitz 1892 |. c. pag. 125 Anm.

noch nicht stattgefunden.

6), Moebius 1891 |. c. pag. 341.

?) Askenasy und Förster: Beiträge z. bad. Algenflora, Mittheilungen des

bad. bot. Vereins 1892.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. 3

alle von einem Punkt des Steines auszugehen scheinen. Untersucht

man diese Stelle genauer, so findet man, dass sie dort eine oft

einen Millimeter hohe und 2 3 mm im Durchmesser grosse Scheibe

bilden, die dem Steine enge aufliegt. Selbst Büschel, welche unten

nur aus einem einzigen Stämmchen bestehen, tragen eine solche

Scheibe, welcher ich den Namen Haftscheibe oder Fuss beilege.

Von ıhr sprossen fortwährend die einzelnen Stämmchen aus, denn

man trifft oft, von derselben Scheibe ausgehend, neben den grössten

Sprossen alle möglichen Uebergänge bis zu solchen, die kaum mit

dem Auge wahrnehmbar sind. Ihre constant zunehmende Grösse

bei älteren Exemplaren beweist ferner, dass die Scheibe in die Breite

zu wachsen fähig ist.”) Durch einen gelinden Zug löst sie sich meist

leicht vom Steine los und zeigt unten eine glatte, meist ebene,

schwärzliche Oberfläche. Bringt man sie in Salzsäure, welche mit

Alkohol gemischt ist, so tritt starkes Aufbrausen ein und etwa unten

noch anhaftende Sandkörnchen fallen rasch ab, ein Zeichen, dass die

Scheibe stark mit kohlensaurem Kalk versetzt und durch denselben

gleichsam an den Stein angemauert ist. Ich benutzte deshalb Salz-

säure, oder auch, um den Zellinhalt zugleich zu fixiren, meistens

Flemming’sche Lösung, um die Scheibe sorgfältig vom anhaftenden

Gesteine zu lösen.

Die Länge der Büschel ist sehr variabel. An günstigen Stellen

sind sie meterlang, an anderen kaum ein paar Centimeter. Schlägt

man solche lang hinfluthende Büschel zurück, so findet man häufig

die überflutheten Steine mit einem braunen bis stahlblauen Ueber-

zuge bedeckt, in welchem sich blaue, bräunliche oder selbst schwärz-

liche, oft harte, oft weiche Polsterchen und Pünktchen befinden 9

und darunter junge Thoreaexemplare in jeder Entwickelungsstufe

mit Sprossen von oft kaum sichtbarer Länge, noch gänzlich unver-

zweigt, doch auch jetzt schon von einer deutlich erkennbaren, wenn

auch kleinen Haftscheibe ausgehend. Diese Ueberzüge mit ihren

Polsterchen etc. bildeten das hauptsächlichste Material zu den im

Folgenden mitgetheilten entwickelungsgeschichtlichen Untersuchungen.

°) Doch ist dieses Wachsthum kein unbegrenztes. Denn mit ihrer Ver-

breiterung wird die Anzahl der abgehenden Sprosse eine grössere und da-

durch auch der Zug des strömenden Wassers, so dass sie zuletzt vom Steine

abgelöst wird. Ferner hat sich gezeigt, dass von einer gewissen Zeit an am

Rande dieser Haftscheibe die Cystocarpien entstehen, wodurch die Verbreiterung

abgeschlossen zu sein scheint. 4

°) Diese Pünktchen und Polsterchen gehören, wie es sich gezeigt hat,

vielfach in den Entwickelungskreis der Thorea, meistens aber sind sie von

Schizothrix (Inactis) pulvinata (Ktzg.) Gomont gebildet, seltener von einer

mir unbekannten Lyngbya-Art (in die Nähe von Lyngb. nigra gehörend) oder

von einer neuen, später zu beschreibenden Trentepohlia, die hier Sporangien

bildet und in die Nähe von Tr. Willeana Hansg. zu stellen ist.

4 W. Schmidle.

Wie die Länge, so ist auch die Dicke der Stämmchen sehr

variabel und zweifellos mit dem Alter zunehmend. Junge Exemplare

haben oft blos eine mittlere Dicke von 400 u (ohne Assimilations-

haare), alte jedoch eine solche von etwas über einen Millimeter.

Auch nimmt sie bei jedem Spross von unten nach oben stetig ab.

Bei kräftig vegetirenden habe ich unten oft 1Y; mm im Durchmesser

gemessen, an den Zweigspitzen jedoch oft kaum 200 « (immer ohne

Assimilationshaare).

Auch der Einfluss des Lichtes ist deutlich erkennbar. Exem-

plare, welche, von grösseren Büscheln bedeckt, im Dunkeln zu

vegetiren gezwungen sind, sind immer sehr dünn und langgestreckt,

d. h. im Allgemeinen sehr wenig verzweigt.!®)

Noch auffälliger ist der Einfluss des Lichtes auf die Farbe der

lebenden Büschel. Ueppiger wachsende Exemplare an tiefen dunkeln

Stellen des Flusses sind, in einiger Entfernung gesehen, vollständig

schwarz, die einzelnen Sprosse erscheinen bei näherer Betrachtung

schwarzbräunlich. An helleren Stellen werden solche Exemplare

bräunlich bis hellbraun. Stark beleuchtete werden vollständig oliv-

grün. Besonders in der Cultur !!) lässt sich der Einfluss des Lichtes

schön constatiren. Selbst fast schwarzgefärbte Büschel in Gläsern

oder weissen Porzellanschaalen dem Lichte ausgesetzt, wurden in

kurzer Zeit olivgrün, ein Farbenwechsel, der viel langsamer eintritt,

wenn zur Cultur dunkle oder braune Thongefässe verwendet werden.

Beim Absterben verändert sich die Farbe in Roth und ist end-

lich der rothe Farbstoff durch das Wasser extrahirt, so erscheinen

die Fäden lebhaft chlorophyligrün oder gelblichgrün. Es kommt

eben dann der Chlorophyllfarbstoff zum Vorschein, der bekanntlich

durch Alkohol aus der frisch getödteten Pflanze extrahirt werden

kann. Formol, in ca. 4%, Lösung angewendet, extrahirt einen hell-

braunen bis dunkelbraunen Farbstoff etwa von derselben Nuance,

wie ihn auch die lebende Pflanze zeigt. Die eingelegten Fäden er-

scheinen zuletzt olivgrün.

Der vom Wasser ausgezogene Farbstoff '?) ist im durchfallenden

Licht schön blauviolett, im auffallenden ziegelroth. Er ist unlöslich

in Alkohol, Aether, Benzol, Schwefelkohlenstoff und Xylol. Dem

Lichte und der Luft ausgesetzt, hält er sich nicht, doch dauert es

10) Vergl. dazu das pag. 22 in der Anmerkung Gesagte.

1) Thorea lässt sich in kalkhaltigem Wasser bei öfterem Wasserwechsel un-

schwer cultiviren. Mein Freund F. Förster hatte ein Exemplar fast ein Jahr

lang in Cultur, welches centimeterlange frische Sprossen getrieben hatte.

12) Derselbe wurde dadurch erhalten, dass man lebende Thoreabüschel in

Wasser einlegte, das Gefäss verschloss und im Dunkeln aufbewahrte. Schon

nach wenigen Tagen zeigte die klar filtrirte Lösung die genannten Farben.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. 5

Monate lang, bis eine Entfärbung eintritt. Verkorkt und im Dunkeln

aufbewahrt zeigte jedoch eine von mir seit einem Vierteliahre auf-

bewahrte Probe noch eine schöne, wenn auch etwas veränderte

Färbung.

Gegen Wärme ist er sehr empfindlich. Bei einer Temperatur

von 50— 60° verliert er seine Fluorescenz und bekommt eine

röthlichblaue Farbe. Bei Siedehitze tritt Entfärbung ein. Dabei

konnte ich bei länger aufbewahrtem Materiale Folgendes con-

statiren: Die Lösung kochte unter heftigem Aufschäumen, welches,

wenn auch in geringerem Grade, anhielt, bis sie verdampft war.

Es blieb ein röthlichblauer Rückstand zurück. Und zugleich hatten

sich im Schaume ebensolche Flocken gebildet, die sich nachher in

keiner Säure oder in concentrirter Kalilauge lösten. Nur veränderten

sie, wie auch der Rückstand, ihre Farbe. In concentrirter Salz- oder

Schwefelsäure wurden sie schön blau, in Salpetersäure hellroth und

in Kalilauge schmutzig-violett. Einige Mal war auch die gekochte

Lösung röthlichblau. Filtrirt jedoch wurde sie ebenfalls farblos und

der auf dem Filter zurückbleibende Rückstand verhielt sich wieder

wie die coagulirten Flocken.

Ganz ähnliche Erscheinungen fanden Rosanoff!?) und Schütt '*)

für das Phycoerythrin. Nach denselben verliert es schon bei 30 —45

seine Fluorescenz und wird bei 60° farblos; von einer Coagulation

des Farbstoffes, den ich übrigens auch nur an alter Lösung beobachtete,

berichten sie nichts. Ganz übereinstimmnnd jedoch ist das Verhalten

gegen Luft und Licht und die genannten Flüssigkeiten.!?)

Dasselbe gilt auch für die Reactionen auf Alkohol.!#) Giesst

man concentrirten Alkohol zu unserer Lösung in geringer Menge,

so zeigt sich keine Veränderung, ausser dass die lösung etwas

heller wird, wie dieses schon Rosanoff'!?) beschreibt. Bei weiterem

Zusatz trübt sie sich kaum merklich. Lässt man dann die Mischung

einige Stunden stehen, so bilden sich von oben beginnend zarte,

rosenrothe Flocken, die nach ihrem Niedersinken eine klare, blassrothe

Flüssigkeit mit orangegelber Fluorescenz zurücklassen. Weiterer

Zusatz ruft weiteren Niederschlag hervor, und zuletzt ist die übrig-

bleibende Flüssigkeit vollkommen klar und ungefärbt.

23) Rosanoff: Observations sur les fonctions et les proprietes des pig-

ments de diverses Algues. Mem. de la Soc. imp. des Scienc. nat. de Cher-

bourg 1867.

4) Schütt: Weitere Beiträge zur Kenntniss des Phycoerythrins. Berichte

d. D. bot. Gesellschaft 1888, p. 305 bis 323.

15) Schütt I. c. pag. 308 und 309.

1) Schütt Il. c. pag. 309 u. ff.

1) Rosanoff|.c. pag.

6 W. Schmidle.

Die Flocken selbst lösen sich im Wasser, Die filtrirte Lösung

ist in der Farbe sehr geschwächt, blassrosa und zeigt eine schwache,

orangegelbe Fluorescenz. Reaction und Lösung stimmen genau mit

der Schütt’schen überein, und ich glaube deshalb, wie Schütt es

gethan, auch diese Lösung mit 3-Phycoerythrin im Folgenden be-

zeichnen zu können.

Von Säuren liess ich concentrirte Salpetersäure, Schwefelsäure,

Salzsäure, Essigsäure, Milchsäure und 5%, Carbolsäure einwirken,

ohne bei kurz andauernder Einwirkung einen auffälligen Unterschied

constatiren zu können. Die Lösung verliert jedesmal ihre Fluorescenz,

wird blauviolett und erhält bei weiterem Zusatz einen immer bläu-

licheren Ton. Ein Niederschlag bildet sich scheinbar nicht, denn

die Lösung verliert nicht ihre Klarheit. Bleibt jedoch eine mit Salz-

säure stark versetzte Lösung längere Zeit stehen, so wird sie voll-

ständig farblos, und es erscheint am Grunde ein hellblauer Nieder-

schlag. Aehnliches fand auch Schütt,'®) nur hatte bei ihm die

Flüssigkeit eine dunkelblaurothe Färbung erhalten. Der Unterschied

rührt jedenfalls daher, dass bei Schütt der Salzsäurezusatz nicht zur

vollständigen Entfärbung hinreichte, denn er selbst giebt an, dass

bei Zusatz von genügend viel Säure die Flüssigkeit farblos wird.

Die scheinbare blaue Farbe der frischen Mischung rührt nach Schütt

von dem fein vertheilten und in der Lösung suspendirten Niederschlag

her, was mit meinen Beobachtungen vollständig übereinstimmt. Da

also auch hier wieder die Reaction und das Aussehen der erhaltenen

Lösung und, wie wir sehen werden, ihr qualitatives Spectrum mit

der Schütt'schen übereinstimmt, so glaube ich auch hier, analog den

durch Säure veränderten Farbstoff als y-Phycoerythrin ansprechen

zu können.

Von denAlkalien übt nach Schütt!®) Ammoniak eine verschiedene

Wirkung aus als Kalilauge oder Natronlauge. Dieses Verhalten tritt

auch bei unserem Farbstoff in gleicher Weise klar zu Tage. Bei

Zusatz von einigen Tropfen Ammoniak wird hier wie dort die Lösung

schön roth mit schwacher orangegelber Fluorescenz, Am Boden

setzen sich sehr schwach gefärbte röthliche Flocken ab. Je mehr

Ammoniak nun zugesetzt wird, um so farbloser wird die Lösung, und

zuletzt ist der ganze Farbstoff in Gestalt von weisslichen Flocken

gefällt. Durch Säurezusatz entsteht nicht mehr die ursprüngliche

fluorescirende Flüssigkeit, sondern eine solche, welche dem oben

beschriebenen $-Phycoerythrin vollkommen gleicht.

Gegen Kalilauge dagegen ist die Lösung sehr empfindlich.

Schon einige Tropfen bewirken eine fast vollständige Entfärbung,

18) Schütt |. c. pag. 314.

19) Schütt I. c. pag. 318 u. ff.

— be 6% 2. ee ; 4 Inc -, u > a A en u. Kö > en

Untersuchungen über Thorea ramosissima Borv. 7

ein schwaches, unbestimmtes Roth erscheint; ein weiterer Zusatz

vernichtet die Farbe vollkommen. Es bilden sich dann bald bei

ruhigem Stehen blassolivengrünliche, zarte Flocken, und auch die

darüberstehende Lösung zeigt diesen Ton, wenn auch in geringerem

Maasse. Zusatz von einer Säure stellt auch hier die Färbung wieder

her, und zwar ist auch hier der entstehende Farbton der der »-

Phycoerythrinlösung — doch nur bei nicht zu langer Einwirkung

der Kalilauge —, später tritt keine Rothfärbung mehr ein.

Hier nun stimmt die Reaction darin nicht mit der von Schütt

beschriebenen überein, dass dort Lösung und Niederschlag voll-

kommen farblos waren. Um so merkwürdiger ist es daher, dass

Naegeli und Schwendener?°) bei Einwirkung von Kalilauge auf

Florideenfarbstoff genau unsere blassolivengrüne Farbe erhalten hatten.

Ganz in gleicher Weise wie die Kalilauge (nur sind Niederschlag

und Lösung vollkommen farblos) wirkt eine Barythydratlösung

sowohl auf unseren Farbstoff wie auf den von ausgesprochenen

Florideen,?') und ebenso übereinstimmend ist das Verhalten der

Salze. Nach längerem Stehen erhielt ich durch Zusatz von über-

schüssigem Chlornatrium einen kaum nennenswerthen blaurothen

Niederschlag, die Lösung selbst behielt Farbe und Fluorescenz.

Stärker wirkt Chlorbarium. Doch auch hier wird nur ein Theil des

Farbstoffes in lockeren blauvioletten Massen niedergeschlagen, die

darüberstehende Flüssigkeit jedoch gleicht, wie auch Schütt ?*) es

fand, der oben beschriebenen 7-Phycoerythrin-Lösung.

Leider war es mir nicht möglich, unseren Farbstoff und dessen

Modificationen quantitativ spectroscopisch zu untersuchen, da

ich ein brauchbares Spectroscop nicht erlangen konnte. Ich musste

mich mit der qualitativen Untersuchung begnügen.””) Dass ich

einen für diese Untersuchung brauchbaren, wenn auch einfachen

Spectralapparat mit Scala von Desaga in Heidelberg erhielt, verdankte

ich vorzüglich den liebenswürdigen Bemühungen von Herrn Professor

Dr. Askenasy, welchem ich an dieser Stelle meinen herzlichsten

Dank ausspreche. Bei der Aichung der Scala und der Untersuchung.

der Lösung selbst hat er mich ferner auf's eingehendste unterstützt,

so dass viele der angeführten Beobachtungen eben so sehr von

ihm als von mir herrühren.

%) Nach Schütt I. c. pag. 318.

#1) Schütt I. c. pag. 320.

22) Schütt I. c. pag. 321.

23) Fine solche Untersuchung erscheint mir hier jedoch genügend, da

es sich in erster Linie um die Diagnosticirung unseres Farbstoftes handelt

und nicht um dessen physiologische Bedeutung. Vergl. Reinke: Photometrische

Untersuchungen; pag. 167.

8 W. Schmidle.

Bei einer Schichtendicke von 54 mm der klar filtrirten Lösung

war nur rothes Licht zwischen den Frauenhofer’'schen Linien B und

CÜ bemerkbar. Von A—=630 wu an war das Spectrum dunkel. Bei

einer 25 mm dicken Schichte kamen deutlich 3 Absorptionsbänder

zum Vorschein, ein schmales im Roth vom A = 634-607 wu mit

verwaschenen Rändern, ein breites im Gelbgrün von A = 582—540 uu,

und ein mittleres im Blau von A = 506—496 uu. Die rechte Seite

des letzten Bandes war sehr verwaschen und das rechte Ende des

Spectrums wieder hell. Die trennende Lichtzone zwischen den

beiden letzten Bändern war noch kaum bemerkbar, diejenige zwischen

dem ersten und zweiten Bande jedoch ausgesprochen. Tab. III Fig. 1a.

Diese tritt also vor jener auf. Es wurde nun die Lösung etwa zur Hälfte

mit Wasser verdünnt, das Spectrum wieder untersucht und so fortge-

fahren, bis zuletzt nur noch das breiteste mittlere Band als schwacher

Schatten sichtbar war. Tab. Ill Fig. b, c, d, e stellen die Spectren der

aufeinanderfolgenden Verdünnungen dar. Die Verticallinien geben

die Wellenlinien in hunderttausendstel Millimeter, der obere Rand

jeder Horizontalkolumne entspricht der Lichtstärke 0, der untere der

Lichtstärke 1. Die Spectren sind also genau nach der von Schütt?*)

angegebenen Methode gezeichnet und können deshalb direct mit den

seinen verglichen werden. Bei der zweiten Verdünnung war das

Band im Roth nur noch als schwacher Schatten bei A— 627 wu be-

merkbar, bei der dritten dasjenige im Blau, die Stelle des Schattens

lag bei A— 506 wu. Das Band im Roth fehlte ganz. Bei noch

einer weiteren Verdünnung war nur noch das mittlere stärkste Band

sichtbar und auch dieses auf eine schwache Schattenlinie bei A— 560 au

herabgesunken.

Von unserem 3-Phycoerythrin erhielt ich zwei sehr schwache

Bänder bei der Schichtendicke von 54 mm, denn die Lösung war

nach dem Filtriren nur noch sehr schwach blassrosa gefärbt. Es

waren dieses die Bänder im Gelbgrün und Blau genau wieder an

den oben bezeichneten Stellen. Wie bei Schütt?) fehlte also auch

hier das Band im Roth. Ob das zweite Band im Grün bei A—=670 wu,

welches Schütt für diese Modification und den urspünglichen Ceramium-

Farbstoff angiebt, hier überhaupt auch fehlte, kann aus unserer Be-

obachtung noch nicht gefolgert werden, da auch bei Schütt dieses

Band in den Spectren von geringer Schichtendicke nicht vorhanden

war. Mir scheint sein Vorkommen jedoch nicht gerade wahrscheinlich,

da es auch bei unserer ursprünglichen Lösung nicht vorhanden ist.

#4) Schütt. Ueber das Phycoerythrin. Berichte d. D. bot. Gesellschaft

pag. 42, Tab. III, Fig. 1.

>) Schütt I. c. pag. 311, Tab. XV, Fig. 1.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. 9

Einer genaueren Prüfung konnte ich unser y-Phycoerythrin

unterwerfen. Tab. Ill Fig. 1f ist sein charakteristisches Spectrum

bei 25 mm Schichtendicke gezeichnet. Man sieht sogleich, wie voll-

kommen es demjenigen entspricht, welches Schütt von seinem 7-

Phycoerythrin entworfen hat.?®) Hier wie dort ist es gegen dasjenige

der ursprünglichen Lösung vollkommen verändert. Das Band im

Roth fehlt, die beiden übrigen Bänder sind verbreitert und die End-

absorption im Blau hat zugenommen.

Vergleichen wir endlich das Spectrum unserer ursprünglichen

Lösung mit den bis jetzt bekannten Spectren von Pflanzenfarbstoffen,

so können nur das Chlorophyll- und das Phycoerythrinspectrum

zum Vergleiche herangezogen werden, denn nur diese enthalten

Absorptionsbänder.”’) Nun fehlt aber unserem Spectrum das

charakteristische Band I des Chlorophylis, an seiner Stelle ist wie

bei den meisten Phycoerythrinspectren gerade der Ort der grössten

Lichtintensität. Mit dem letzteren hat es ferner gemeinsam die stetig

abnehmende Absorption am blauen Ende, welche beim Chlorophyll

hier ansteigt, und die charakteristischen Bänder III und IVb, welche

bei allen bekannten Modificationen des Phycoerythrins erhalten

bleiben.

Zwei Unterschiede sind freilich vorhanden, einmal das Fehlen

des zweiten Bandes im Grün, des Bandes IVa im Chlorophyll-

spectrum, und zweitens die etwas verschiedene Lage des Absorptions-

bandes im Roth, verglichen mit der von Pringsheim?®) und Schütt?®)

für das Phycoerythrin angegebenen. Diese fanden nämlich hier das

Band mit dem Chlorophylibande II gleichliegend (bei A = 610 un),

während bei uns dasselbe auf A — 627 uu bei stärkster Verdünnung

zu liegen kommt.

Der erste Unterschied ist in diagnostischer Hinsicht gänzlich

ohne Bedeutung. Denn wie Schütt?) nachgewiesen fehlt bei der

bekannten Floridee: Dumontia filiformis im qualitativen Spectrum

ebenfalls dieses Band. Dafür ist das Band III bedeutend verbreitert,

so dass es scheint, als ob Band III und IVa verschmolzen wären.

Beides tritt nun bei unserem Spectrum in genau so klarer Weise

zu Tage, und so ist diese scheinbare Differenz eher als weiterer

Grund dafür aufzufassen, dass unser Farbstoff zum Florideenroth

zu rechnen ist. Jedenfalls zeigt er wieder, wie es aus den photo-

26) Schütt Tab. XV, Fig. 2.

2?) Das Spectrum des Phycophaein und Phycopyrin siehe bei Schütt:

Ber. d. D. bot. Gesellschaft 1887 und 1890,

®) Pringsheim: Ueber natürliche Chlorophylimodificationen. Monats-

schrift der Akad. d. Wissensch. zu Berlin 1875, pag. 749.

2) Schütt. Ueber das Phycoerythrin |. c. pag. 43.

») Schütt I. c. pag. 45.

ee en Ye uds ie, u

ni: . 0 FE a Sn

10 W. Schmidle.

metrischen Messungen Reinke’s hervorgeht, dass die Trennung der

beiden Bänder in das Gebiet der subjectiven Erscheinungen gehört.

Schwerer erklärbar scheint mir der zweite Unterschied, da nach

Schütt's Angaben?!) das Chlorophyliband II im Spectrum von

Ceramium rubrum ein Band erster Ordnung darstellt mit einem

freilich sehr schwachen Maximum zwischen A = 620 u und 603.

Fine genaue quantitative Untersuchung unseres Farbstoffes ist hier

wohl zur vollständigen Klarlegung noch nothwendig. Ich habe mich

zwar über die Lage dieses Bandes wiederholt vergewissert und alle

meine Beobachtungen, wie auch diejenigen von Herrn Prof. Askenasy,

die ich einzeln durchrechnete, ergaben dieselbe Lage. Ein Irrthum

in der Lage erscheint mir daher ausgeschlossen, wenn er nicht durch

die mangelhafte Construction des Apparates hervorgerufen sein sollte.

Jedenfalls ist jedoch die Differenz nicht derart, dass durch sie

die Zugehörigkeit des Thoreafarbstoffes zu dem der Florideen aus-

geschlossen wäre. Denn es muss betont werden, dass gerade im

Roth die Lage der Absorptionsbänder beim Phycoerythrin recht variabel

zu sein scheint. Askenasy,??) Rosanoff und Reinke geben gar keine

Absorption im Roth an. Erst Pringsheim®®) fand zuerst deren zwei,

welche ihrer Lage nach mit Chlorophyliband I und II zusammen-

fielen. Der Intensität nach waren sie III und IV gegenüber sehr

geschwächt und zwar Band II noch mehr als I. Schütt?*) dagegen

3) Schütt I. c. pag. 45 Tab, III Fig. 3.

») Askenasy: Beiträge zur Kenntniss des Chlorophylis und einige dasselbe

begleitende Farbstoffe. Bot. Zeitung 1867, pag. 233.

Das Fehlen der Absorptionsbänder im Roth hatte wahrscheinlich darin

seinen Grund, dass die genannten Beobachter nicht den ursprünglichen Farb-

stoff, sondern eine Modification derselben beobachtet haben. Wahrscheinlich

war es das haltbarere und fast bei jeder Reaction zur Erscheinung kommende

#-Phycoerythrin, welches auch das von ihnen angegebene Spectrum hat. Wird

die Lösung durch Zerreiben und Aufweichen getrockneter Herbarpflanzen

gewonnen, so ist dies ziemlich sicher. Doch auch eine aus frisch gesammelten

Pflanzen gewonnene Lösung verändert sich in dieser Richtung. So zeigte eine

ca. 5 Wochen alte, sorgsam aufbewahrte Thoreafarbstofflösung nicht mehr

das Band im Roth, obwohl sie es anfänglich hatte. Nur Band III und IVb

waren vorhanden und zwar war Band ill nach rechts hin viel stärker ver-

breitert, als dies ursprünglich der Fall war. Einmal glaubte ich bei sorgsam

gewählter Concentration das Band IVa durch eine etwas stärkere Verdunkelung

am rechten Ende der Verbreiterung unterscheiden zu können. Bei Verdünnung

erlosch zuerst Band III, während Band !IVb als breiter Streifen noch erhalten

blieb. Das rechte Ende des Spectrums war hell. Dies Spectrum gleicht am

meisten dem von #-Phycoerythrin, mit welchem die Lösung auch die röthliche

Farbe und orangegelbe Fluorescenz gemeinsam hatte. Eine Behandlung dieses

Farbstoffes mit Säure ergab nun rothe statt wie vorher blaue Niederschläge.

») Pringsheim |. c. pag. 752.

“#) Schütt l. c. pag. 44 u. ff.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Borv. 18:

fand bei Ceramium rubrum nur ein einziges mit II zusammenfallendes,

bei Dumontia filiformis jedoch wieder zwei Bänder. Von diesen

fiel jetzt nur eines mit II zusammen, das andere hatte eine neue

Lage bei A 650, grenzte also zwar sehr nahe an I der Chlorophyll-

lösung, doch blieb deutlich rechts. Und umgekehrt, als Pringsheim

es gefunden, war nun Band II das stärkere.

Bei dieser Variabilität, die im rothen Theile des qualitativen

Florideenspectrums zu herrschen scheint, können wir also aus der

etwas veränderten Lage unseres Bandes keinen Schluss gegen die

Zugehörigkeit unseres Farbstoffes zum Florideenroth ziehen, es stimmt

sonst das ganze Spectrum auffällig überein. Es wäre z. B. möglich,

dass unser Band ebenso eine kleine Verschiebung gegen Band II

vorstellt, wie Schütt eine solche gegen I gefunden hat. Wahrschein-

licher scheint es mir jedoch, dass eine genaue quantitative Unter-

suchung unseres Bandes direkt seine Uebereinstimmung mit Band II

zur Evidenz bringen wird. Denn Band II ist zwar ein solches erster

Ordnung, doch von so geringem Maximum, dass seine relative

Dunkelheit im qualitativen Spectrum vorzüglich auf subjective Contrast-

wirkung zurückzuführen ist.?°) Der Maximalbereich dieses Bandes

erstreckt sich nun nach der Zeichnung Schütt's I. c. Tab. III Fig. 4

bei Dumontia filiformis, gerade derjenigen Floridee, deren Spectrum

im Uebrigen mit dem unsrigen vollständig übereinstimmt, von A —= 629 ru

bis A— 612 vu; unser Maximum bei A — 627 um fällt also noch in

diesen Bereich hinein, und es ist nun nicht ausgeschlossen, dass

irgend welche subjectiven Wirkungen das Maximum im qualitativen

Spectrum bei uns an's linke Ende zu A — 627 uw, wie bei Schütt

an's rechte zu 4 = 610 wu verschoben haben.

Fassen wir zum Schlusse die Resultate nochmals kurz zusammen.

Wir sehen, dass unser Thoreafarbstoff wie das Phycoerythrin löslich

ist in kaltem Wasser, unlöslich in Alkohol, Aether, Benzol, Schwefel-

kohlenstoff, fällbar durch Alkohol, das Fällungsprodukt dem von

?-Phycoerythrin völlig gleichend, ebenso fällbar durch Säuren mit

einem völlig übereinstimmenden Fällungsprodukte, mit denselben

Reactionen von Ammoniak, Kalilauge, Kochsalz und Chlorbaryum, mit

einem Spectrum, welches dem von Dumontia filiformis bis auf eine

geringe Abweichung völlig gleicht, und wir müssen so wohl zum

Schlusse kommen, dass der Thoreafarbstoff dem Phycoerythrin zu-

gerechnet werden muss.

Bevor ich zur Darstellung der Entwickelung unserer Alge über-

gehe, möchte ich über den Aufbau des Sprosses noch das Wichtigste

anführen, welches mir zum Verständniss desselben nöthig erscheint.

35) Schütt I. c. pag. 45.

sr 0 Be

12 W. Schmidle.

Wesentlich Neues ist natürlich nach den eingehenden Untersuchungen

von Schmitz ?®) und Moebius°?) nicht zu erwarten.

Der cylindrische Spross besteht bekanntlich aus Mark- und

Vegetationsfäden; die ersteren, durch Collode zusammengehalten,

bilden das Gewebe des Stammes, die letzteren, unter sich frei und

meist unverzweigt, die dichte und allseits senkrecht abstehende Be-

haarung,.

Durchweg sind die scheinbar gleichmässig vertheilten Haare

büschelweise, doch in geringer Zahl an der Basis mit einander ver-

wachsen. Ihre rechteckigen Zellen sind 4—7 u breit, gegen die Spitze

des Fadens zu verschmälert, und dort 5—-6 mal länger als breit.

Gegen die Basis zu werden sie allmählich kürzer und breiter, und

an der Basis selbst, wo das Haarbüschel mit den Markfäden in Ver-

bindung steht, befinden sich einige Zellen (selten nur eine einzige),

die durch ihre Dicke und Kürze auffällig ausgezeichnet sind, die

Basalzellen. Mehrere Haare haben diese Basalzellen oft gemeinsam,

aus ihnen sieht man junge wenigzellige Haare auswärts sprossen,

von ihnen entspringen auch die kurzen, an der Spitze oft verzweigten

Fäden, die am Ende die birnförmigen Monosporen tragen, sonst aber

den Haaren ziemlich gleichen, von ihnen gehen endlich auch die

unten beschriebenen Querfäden wieder in den Stamm.

Die Zellen sind alle reich an Farbstoff; man erkennt unschwer

einen in der Zellmitte gelegenen Zellkern; mit Delafield’schem

Haematoxylin wird er gefärbt, und schon ungefärbt ist er als heller

Fleck erkennbar. Die Chromatophoren sind wandständig, platten-

förmig mit mehr oder weniger abgerundeten Ecken. Im Zelllumen

zerstreut, namentlich um den Zellkern gehäuft, sieht man in der

lebenden ungefärbten Zelle kleine Körnchen, die ich am ehesten für

Stärkekörner halten möchte. Doch färben sie sich nicht. Bei Jod-

zusatz wird, wie schon Moebius und Schmitz angeben, das ganze

Zellinnere rothbraun gefärbt und gerinnt in rundlichen gestaltlosen

Massen.

Die Membran ist dick, mit Delafield’schem Haematoxylin färb-

bar, freilich erst nach 24stündiger Einwirkung und vorheriger Be-

handlung mit Chromessigsäure, welches die hinderliche Collode

auflöst. Unfärbbar scheint sie mit Magdalaroth und schwach mit

Methylenblau. Jod und Schwefelsäure ergeben eine deutliche Cellu-

losereaction namentlich in den äussersten und innersten Membran-

schichten. Schwach wirkt Chlorzinkjod. Haematoxylin und Magdala-

roth machen endlich auch die Verbindungskanäle zwischen den

einzelnen Zellen sichtbar. Mir schien es oft, als ob eine ausgesprochene

%#) Schmitz |. c.

#) Moebiusl. c.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. 13

Durchbrechung stattfände; doch konnte ich dieses selbst mit den

stärksten Systemen nicht ausser allen Zweifel setzen. Denn viele

Präparate sprachen ebenso dagegen. (Vergl. Anhang I.)

Ganz anders sind die Markfäden. In der Jugend®®, kurzzellig,

verlängern sie fortwährend ihre Zellen, so dass diese zuletzt nicht

mehr auf einmal übersehbar sind. l:benso wachsen sie etwas in die

Dicke und können, zuerst (d. h. an der Fadenspitze) nur 5-8 u

breit, eine Breite von 12 u erreichen. Sie erscheinen beinahe farb-

los, denn die wandständigen Chromatophoren fehlen oft fast gänzlich.

Am Ende sind die alten Zellen oft deutlich eingeschnürt. Ein Zell-

kern ist nur schwer nachzuweisen. Die Membran ist dünner, doch

wohl entwickelt; sie zeigt ebenso die Cellulosereaction, ist ebenso

mit Haematoxylin nach langer Einwirkung färbbar, doch scheinen in

den Querwänden die Verbindungskanäle gänzlich zu fehlen (siehe

jedoch Anhang I.)

Ihre Wachsthumsrichtung ist schr verschieden. Bald durchsetzen

sie das Stämmchen der Quere nach (Querfäden nach Moebius), bald

verlaufen sie schief aufwärts oder sind dem Seitenrand vollständig

parallel (längsfäden bei Mocbius), bald sind sie mehr oder weniger

gerade, bald vielfach verworren und gekrümmt.

Das von ihnen gebildete Gewebe besteht, wie man an feinen

Längsschnitten deutlich unterscheiden kann, aus zwei verschiedenen

Theilen, den beiden Randzonen und der centralen Mittelzone.”?)

3) 7. B. in den Zweigspitzen bei den längsverlaufenden Fäden (s. u.) oder

bei jungen den Basalzellen der Haarbüschel eben entsprossenen (Juerfäden.

Moebius 1. c. 1891 pag. 340 behauptet, dass bei den nach innen gerichteten

Querfäden keine Querwandbildung stattfände. Ich kann dies nicht in allen

Fällen bestätigen, sondern fand an jungen, den Basalzellen entsprossenden Fäden

dann und wann sogar ziemlich kurze und viele Zellen.

8) Nur an feinen Längsschnitten durch Paraftin- oder Celloidineinbettung

hergestellt, ist dieses klar zu sehen. Bei zerquetschten Stämmchen sind die

Fäden meist scheinbar regellos verworren, und namentlich die Längsfäden

nicht mehr zu bemerken. Druckpräparate sind jedoch dann vorzuziehen, wenn

es sich um den Zusammenhang der einzelnen Fäden handelt, da diese vielfach

gewunden, in den Längsschnitten meist zu kurz zerschnitten sind.

Die Randzonen lassen sich leicht von der Mittelzone trennen, da die

Zwischenschicht sehr locker ist. Man braucht nämlich nur einen ziemlich

dicken Längsschnitt unter Deckglas senkrecht zu zerquetschen, last immer

theilt er sich bei nicht zu starkem Druck der Länge nach in die beiden Rand-

und in die Mittelzone. Jede Randzone kann nun cbenso weiter der Länge

nach gespalten werden, wie dieses aus ihrem Baue wohl zu verstehen ist. Man

erhält dadurch zuletzt kleine Theilchen, die nur aus einigen in ihrer Lage unver-

änderten Längsfäden mit ihren Haarbüscheln und deren Querfäden bestechen.

Es ist hier wohl noch zu bemerken, dass man unsere Mark- und Randzonc

nicht verwechseln darf mit dem von Schmitz |. c. Notarisia pag. 711 angeführten

Marke und der Rinde (peripherische Schicht). Die letztere besteht aus den

dicht gedrängten Haarbüscheln, während unsere Mark- und Randzone Theile des

Innengewebes (des Markes nach Schmitz) darstellen.

14 W. Schmidle.

Tab. III Fig. 2. Die ersteren sind gebildet aus ziemlich geraden,

parallel verlaufenden Längsfäden, die von ebensolchen Querfäden

durchwoben sind, Fig. 2b, die zweite aus einem verworrenen,

deutlich dichterem Knäuel kreuz und quer verlaufender Fäden, die

meist noch vielfach gewunden und gekrümmt sind, Fig. 2d. Getrennt

sind sie meistens durch eine schmale, sehr lockere Zwischenschicht,

Fig. 2c, die einmal aus einzelnen schief verlaufenden Fäden*®)

besteht, dann aber zumeist aus den Querfäden der Randzone, die

meistens über dieselbe hinaus bis in den Markknäuel sich fortsetzen,

dort verschwinden, oder denselben durchdringend in der jenseitigen

Randzone wieder als Quer- oder Längsfäden erscheinen und meistens

dort in Haarbüschel enden.

Gehen wir nun zum Verlaufe der einzelnen Fäden selbst über.

Fast unmöglich ist es, denjenigen der Knäuelfäden der Mittelzone

festzustellen, und es scheint mir nur dieses, wie aus dem Gesagten

hervorgeht, sicher zu sein, dass sie als veränderte Längs- und

Querfäden der Randzone aufzufassen sind, welche hier wahrscheinlich

vielfach ineinander übergehen. Relativ leicht jedoch gelingt es bei

den Querfäden. Sie entstehen theils aus den Seitenästen der Längs-

fäden, theils aus den umgebogenen Enden derselben, theils sprossen

sie aus den Basalzellen der Haarbüschel hervor in das schon gebildete

Gewebe. Weitaus am häufigsten ist die letzte Entstehungsweise, selten

die beiden anderen. Der Verlauf selbst ist meist ein sehr kurzer und

leicht zu verfolgender, soweit sie nicht im Markknäuel verschwinden.

Sie durchsetzen quer oder schief aufwärts gerichtet das Stämmchen,

und geben am jenseitigen Rande, ohne Sich meistens verzweigt zu

haben, regelmässig einem neuen Büschel den Ursprung. Dadurch

dann, dass dieses ebenfalls wieder neue Querfäden aussendet, die

sich in das schon vorhandene Gewebe einschieben, kommt vorzüglich

das Dickenwachsthum des Sprosses zu Stande.!')

Viel complicirter ist der Verlauf der Längsfäden. Ihr Ursprung

und ihr Ende bleibt grösstentheils in Sprosspräparaten unbestimmt,

denn sie münden vielfach vom Markknäuel aus und ein, oder treten

schon als Längsfäden in das Präparat ein und am anderen Ende

wieder aus. Doch lässt sich von einem kleinen Theile constatiren,

10) Diese schief verlaufenden Fäden bestehen z. Th. aus solchen, die von

der Markzone ausgehen und in der Randzone zu Längsfäden werden, z. Th.

aus Längsfäden der Randzone, welche sich einwärts neigend im Markknäuel

verschwinden, oder denselben durchsetzen und jenseits wieder als Längs- oder

Querfäden erscheinen. Auch diese endigen meistens in Haarbüschel.

#1) Diese Art des Wachsthums ist vorzüglich von Schmitz |. c. geschildert,

und als die einzig mögliche hingestellt. Ich glaube, dessen Irrthum rührt daher,

dass er hauptsächlich an zerquetschten Stämmchen seine Untersuchungen vor-

nahm, wo die Längsfäden, wie schon gesagt, kaum noch zu bemerken sind.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Borv. 15

dass auch sie, gerade wie die Querfäden, den Haarbüschel entspringen

(wenn auch viel seltener), oder nach Moebius!?) von Querfäden aus-

sprossen oder selbst aus solchen entstehen. Diese sind dann zumeist

von ihrer Ursprungszelle aus schief aufwärts gerichtet, durchsetzen

das Stämmchen und werden erst in der entgegengesetzten Zone

zu Längsfäden.

In ihrem Verlaufe verzweigen sie sich. Die Verzweigung ist

monopodial. Nur selten sind die Zweige lang und stellen dann

wieder Quer- oder Längsfäden dar oder sprossen in die Seitenzweige

als neue Längsfäden hinein. Meist sind sie kurz, unverzweigt und

regelmässig auswärts gerichtet. Sie tragen dann an ihren Enden

immer Haarbüschel, und zwar so, dass zwischen den Basalzellen

derselben und der Verzweigungsstelle nur ein sehr kurzer Raum

besteht. Oft fehlt er vollständig und die Haarbüschel sitzen dann

direkt dem Faden auf.

Bekannt ist, dass Schmitz !?) diese Art der Verzweigung, die

Moebius '!) zuerst geschildert, vollständig in Abrede stellt. Ich

konnte jedoch namentlich im untersten Theile des Stämmchens

genugsam Haarbüschel seitlich aus den Längsfäden hervorsprossen

sehen und zwar in allen Entwickelungsstadien. Auf Tab. I Fig. 1--4

sind solche dargestellt, genau gezeichnet nach vorsichtig heraus-

präparirten Fäden zerquetschter Stämmchen. Fig. 1 stellt den

einzelligen Zustand eines Büschels dar, seitlich aus einem L.ängs-

faden hervorsprossend: in Fig. 3 sind erst die charakteristischen

Basalzellen ausgebildet, die Continuität des Protoplasmas im Mark-

faden bezeugt bei diesem jugendlichen Zustand wohl noch sicher

die seitliche Sprossung.'°) Fig. 2 ist ein Längsfaden mit zwei

noch sehr jungen Büscheln. Das eine trägt bereits einen Sporen-

faden mit einer Spore, während die Assimilationshaare noch voll-

ständig fehlen. In Fig. 4 ist ein entwickeltes, endständiges Büschel

dargestellt, dessen absprossender kurzzelliger Markfaden zwei nach

auswärts gerichtete Sprosszellen junger Haarbüschel trägt.

2) Moebius |. c. 1891 pag. 340.

ich mine 0221 2808:

#4) Moebius |. c. 1891 u. 1892.

15) Dass man jedoch sehr vorsichtig bei solchen Schlüssen sein muss, sagt

schon Schmitz in Notarisia pag. 712 Anm. Fig. 2 Tab. II ist vielleicht ein

Beispiel, wie leicht „ältere Stadien sympodialer Verzweigungssysteme das

Aussehen monopodialer darbieten können.“ Sie stellt das scheinbare Ende eines

Längsfadens aus einem Längsschnitte dar, dessen Zellen auflälliger Weise ver-

kürzt und verdickt sind. Die scheinbare Endzelle trägt am unteren Ende einen

scheinbaren Scitenzweig, die eigentliche Fortsetzung des Fadens, der sich nach

abwärts wendet und weiter unten in ein Ilaarbüschel ausgeht. Wächst nun die

scheinbare Endzelle in der Richtung des ursprünglichen Fadens weiter (wie es

schr den Anschein hat), so erscheint die seitlich abwärts gerichtete Fortsetzung

als monopodialer Seitenzweig.

16 W. Schmidle.

Dass die Längsfäden monopodialer Verzweigung fähig sind, wird

sich übrigens, wie schon Moebius ?*) vermuthete, aus ihrer Entstehungs-

weise ergeben. Sie sind nämlich, wenigstens diejenigen der untersten

Partien des Sprosses, nur verwandelte Chantransien, und dass diese

sich monopodial verzweigen, ist bekannt. Ich glaube übrigens auch

die Ansicht Moebius’*?) über das Verhalten dieser Fäden in den

Zweigspitzen bestätigen zu können, denn in einem Falle bemerkte

ich in dem feinen Längsschnitt einer Zweigspitze einen Längs-

faden, dessen Verzweigung derjenigen von Fig. 8 Tab. III bei

Moebius sehr ähnelte.

Es erübrigt noch zu bemerken, dass auch die Längsfäden, wie die

Querfäden an ihrer Spitze in ein Haarbüschel ausgehen *#) und dass

auf ihnen vorzüglich das Längenwachsthum des Sprosses beruht,

indem sie einmal am Scheitel weiterwachsen, und dann in den

unteren Partien ihre Zellen bedeutend verlängern.

Diese geschilderten Verhältnisse erfahren nun einerseits in den

Zweigenden erwachsener Sprosse und andererseits an der Basis

erwachsener, d.h. in den ältesten Theilen, eine deutlich wahrnehmbare

Veränderung. An ersteren nimmt nämlich, wie Schmitz t?) schon für

die Sprossenden gefunden, die Zahl der Längsfäden in relativ viel

stärkerem Maasse ab, als die Dicke des Stämmchens, wenn ich auch

wie Schmitz ein vollständiges Verschwinden nicht konstatiren konnte.

Damit ist natürlich auch eine Abnahme der Randzonen, die hier

meistens nur aus einem einzigen Längsfaden bestehen, verbunden

und umgekehrt eine relative Zunahme der Markzone, welche ich

zudem einmal mitten von einem Längsfaden durchzogen sah.

Gerade umgekehrt ist es an der Basis der Stämmchen, jedoch

nur in den Partien, die unmittelbar der Haftscheibe folgen. Es fehlt

hier die Markzone vollständig, und der ganze Stamm ist aus einem

überall gleichmässigen Geflechte von dicken Längs- und Quer-

fäden in allen möglichen Uebergängen gebildet, die meistens etwas

mehr gewunden sind als sonst, und direkt in dieser Gestalt aus der

Haftscheibe hervorkommen. Zugleich sind die Haarbüschel am Rande

merkwürdiger Weise sehr wenig entwickelt. Sie bestehen meist nur

aus sehr kurzen und wenigen Haaren, vielfach sogar nur aus sporen-

tragenden. Die Stämmchen haben hier von oben betrachtet (unzer-

schnitten) deshalb ein sehr abweichendes Aussehen. Aus der kurzen

Haarbekleidung treten die wohlentwickelten Basalzellen scheinbar

als eine neue Sporenart sehr auffällig hervor. Mit zunehmender

#) Moebius |. c. 1891 pag. 341.

#) Moebius |. c. 1891 pag. 340.

4) Moebius |. c. 1892 pag. 269.

#) Schmitz: Notariria 1894 pag. 711.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. 17

Haarbekleidung erscheint nun auch bald im Innern die Markzone,

zuerst nur als schmaler Streifen, welcher jedoch rasch die normale

Breite erreicht.

Dieses Verhalten scheint mir zum Verständniss des ganzen

Sprossbaues von Wichtigkeit. Es beweist nämlich, dass ein Spross-

theil bei seiner Anlage bedeutend weniger Längsfäden besass als

nun im ausgewachsenen Zustand. Von diesen letzteren kann also

nur ein sehr geringer Theil aus solchen bestehen, die schon bei

seiner ersten Anlage vorhanden waren, die übrigen müssen erst

nachträglich eingeschoben sein. Das kann nur geschehen entweder

durch Verzweigung der ursprünglichen Längsfäden, oder durch Ab-

zweigung oder Umwandlung von Ouerfäden, oder endlich durch

Sprossung aus den Basalzellen der Haare im unteren Theil des

Stämmchens. Da die Querfäden nun selbst weitaus in grösster Zahl auf

die letztgenannte Art entstehen, so beschränken sich für das Folgende

die Möglichkeiten wohl grösstentheils auf den ersten und letzten Fall.®)

Was nun die erste Möglichkeit betrifft, so reicht sie nicht aus,

das Mehr der Längstäden zu erklären. Denn dieselben verzweigen

sich viel zu selten und wenn es geschieht, so trägt der grösste Theil

der Seitenzweige endständige Haarbüschel, ein weiterer Theil wird

Querfäden und ein weiterer tritt als Längsfäden in die Sprosszweige

ein. Und dazu kommt dann noch, dass bei jeder Sprossverzweigung

selbst ein Theil der ursprünglichen Längsfäden verloren geht; denn

man hat häufig Gelegenheit, zu sehen, wie diese direkt als Längs-

fäden ın die Sprosszweige übertreten.

Wir müssen also folgern, dass ein guter Theil der Längsfäden

in unserer Büschelpartie nicht im direkten Zusammenhange mit

denjenigen steht, die ursprünglich der Haftscheibe entsprossten,

sondern weiter unten im Sprosse selbst aus den Basalzellen ent-

standen ist. Und diese Zahl muss wachsen, je mehr wir uns der

Spitze nähern.

Die Möglichkeit, dass ein ursprünglicher der Haft-

scheibe entsprossener Längsfaden den ganzen, meter-

langen, vielverzweigten Spross bis zur Spitze durchzieht,

ist verschwindend klein.

Es ist nun ferner nicht möglich, zwischen den verschiedenen

Längsfäden eines Stämmchens einen Unterschied zu finden, welcher

*) Anmerkung. Die Möglichkeit, dass Längsfäden nachträglich dadurch

eingeschoben werden, dass aus der Haftscheibe neue in den Stamm hinein-

sprossen und in demselben bis zu unserer Partie weiterwachsen, kommt nicht

vor. Denn man müsste sonst — namentlich in den unteren Sprosstheilen —

die freien Enden solcher Fäden auffinden, was niemand beobachtet hat. Alle

läden endigen vielmehr vielleicht mit Ausnahme am Sprossscheitel immer in

Haarbüscheln.

Hedwigia Ba. NAAV. 1890. 2

Yu ae m rg En a EEE Em zn Eu ee sn u un Laie za nöd u „BE eh a an ug aus

18 W. Schmidle.

auf ihre verschiedene Entstehungsweise hindeutete. Wir müssen

also folgern, dass die neuentstandenen, aus den Basalzellen

hervorgesprossten Längsfäden den ursprünglichen, aus

der Haftscheibe stammenden vollständig gleichwerthig

sind. Sie können also ebenso wie die letzteren das Weiterwachsen

an der Sprossspitze veranlassen.?")

Dadurch kommt aber den Haarbüscheln, aus welchen sie ent-

sprossen sind, eine erhöhte Bedeutung zu. Sie erscheinen gleich-

sam als selbständige Vegetationspunkte, von denen aus

die Pflanze sich immer wieder erneut, gleichsam als selb-

ständige Pflänzchen,diedenMarkfädenentsprossen,selbst

wieder solche treiben können. Der ganze Spross erscheint als

ein System von Einzelpflänzchen, die gleichsam Ausläufer treiben und

durch dieselben auf eine gesetzmässige Art miteinander verflochten

sind, vielleicht vergleichbar mit einem Moospolster, dessen einzelne

Stämmchen aus den freilich später verschwindenden Protonemafäden

entsprossen sind, und die selbst wieder solche treiben können.

Diese Ansicht, dass den Haarbüscheln eine gewisse Selbständig-

keit zukommt, erhält nach meiner Meinung dadurch eine Be-

stätigung, dass dieselben, wenn sie vom Hauptstamme sich loslösen

und frei in's Wasser gelangen, nicht zu Grunde gehen. Ihre Zellen

erleiden nur eine kleine Veränderung und statt der absterbenden

Markfäden sprossen aus den Basalzellen andere hervor, die nun

chlorophyligrün, viel kurzzelliger und dicker sind, auf dem Boden

hinkriechen und mit einem Wort den Charakter des im Späteren be-

| schriebenen Prothalliums tragen. In Fig. 7, Tab. II ist ein solches

| Büschel abgebildet, das gerade solche Fäden zu treiben im Begriffe

ist. Ja selbst grössere Haarstücke wachsen auf diese Weise weiter;

Fig. 4, Tab. Il zeigt ein solches, das ein schon ziemlich ausgebreitetes

Prothallium getrieben hat. Auch die Monosporenbildung hört nicht

auf wie Fig. 18 Tab. I zeigt.°')

Be ae u

Ich komme nun zur Beschreibung der Haftscheibe und damit

zur Entwickelung unserer Alge. Schon eine oberflächliche Betrach-

tung zeigt eine merkwürdige Erscheinung. Statt der sonst überall

senkrecht abstehenden Assimilationshaare sehen wir hier deutliche

Be nn

®) Es ist hier wohl am Platze, darauf hinzuweisen, dass auch der Unter-

schied zwischen Quer- und Längsfäden kein wesentlicher ist. Denn nicht

nur, dass beide ineinander übergehen und dass aus den einen die anderen ab-

k zweigen, können beide auch denselben Ursprung haben, nämlich die Basalzellen

der Haarbüschel, und tragen beide an ihren Enden wieder solche.

51), Es ist deshalb die Erscheinung, welche man häufig zu beobachten Ge-

legenheit hat, dass Thoreastämmchen bei ungünstigen Vegetationsverhältnissen

ihre Haare zum grossen Theil verlieren, wohl als ein Mittel zu deuten, durch

welches die Pflanze die ungünstigen Vegetationsbedingungen zu überwinden sucht.

Untersuchungen über Thorca ramosissima Bory. 19

Chantransiafäden aus der Haftscheibe hervortreten und zwar solche,

die wir unbedenklich zu Chantransia pygmaca Kützg. Tab. phycol.V,

Tab. 45 zählen würden, wenn nicht ihr Zusammanhang mit Thorea

augenscheinlich wäre, Tab. II Fig. 1. Zwar ist schon die Achn-

lichkeit der Assimilationshaare mit Chantransien eine grosse, doch

sind letztere deutlich verschieden durch die geringere Breite, die

fortwährend zunehmende Zelllänge und abnehmende Zellbreite gegen

die Spitze zu, durch die dicken, kurzen Basalzellen und die spär-

liche Verzweigung; diese Unterschiede fallen weg. Die Zellfäden

erreichen nun eine Dicke von 8—12 u, die Zellen sind in demselben

Faden fast überall von gleicher Länge (1', bis 5 mal länger als

breit), die Verzweigung ist reichlich, der Faden ist überall gleich

dick, die Zweige von derselben Dicke oder im ganzen Verlaufe gleich-

mässig dünner. Meist sind sie sporenlos, doch habe ich auch Exem-

plare mit solchen geschen, Tab. I Fig. 9 u. 10. Nur der Zellinhalt und

die Membran sind dieselben geblieben, die Körnchen jedoch sind

verschwunden, die Chromatophoren vielleicht etwas grösser, die

scheinbare Zellverbindung aber durch die Ouerwand ist ebenfalls

vorhanden. ni

Feine Längsschnitte (Tab. III Fig. 3) durch die Haftscheibe

zeigen uns Folgendes: Wir sehen, dass dieselbe aus einem gleich-

mässigen Gewebe von Markfäden besteht, die ganz das charakte-

ristische Aussehen derjenigen des Sprosses besitzen. Meist streben

sie auch nach oben, doch sind sie vielfach vewunden, oft schief und

quer verlaufend, die anders gestaltete Markzone fehlt jedoch voll-

ständig. Nach oben wird das Geflecht deutlich lockerer und geht

hier theils direkt in unsere Chantransien über, theils setzt es sich

völlig unverändert in die Stämmchenbasis fort.

Auch nach unten hin lockert es sich ebenfalls häufig, namentlich

bei jungen Exemplaren; Hohlräume entstehen, oft direkt unterhalb

der Stämmchenbasis, so dass in dasselbe scheinbar sehr wenige

l"äden einzugehen scheinen. Diese Hohlräume sind mit kohlen-

saurem Nalke angefüllt, Massen von Bacillariaceen liegen zwischen

dem Geflechte und dicke Fäden von Cladophora fracta mit ihren

Rhizoiden kriechen zwischen demselben umher. 2)

Dazwischen bemerkt man am Grunde des Schnittes jedoch

andere horizontal kriechende Fäden, meist nur in einer Lage, oft

mehrere übereinander, aus welchen die Markfäden entspringen, und

>?) Ich habe merkwürdiger Weise keinen Fuss auffinden können, welcher

nicht von dieser Alge mehr oder weniger durchsetzt war.

Diese fremden Beimischungen im Geflechte erschweren die Beobachtung

bedeutend. Sie machen einmal die Präparate schr undurchsichtig, so dass cs

feiner Schnitte bedarf, andererseits geben sie zur Täuschung Anlass und machen

anfangs eine besondere Untersuchung nöthig, was zur Thorca gchört, was nicht.

20 W. Schmidle.

vielfach auch direkt die besprochenen Chantransien, Tab. III Fig. 3a.

Sie gehören also sicher zu Thorea. Doch sind sie von ganz verschie-

denem Aussehen als die Markfäden und bilden ein ausgedehntes, doch

meist lockeres, dicht dem Steine anliegendes Geflecht, das ich das

Prothallium der Thorea nennen will, Tab. II Fig.5 u.a. Um dasselbe

zu erhalten, muss man die Haftscheibe sorgfältig mit den anhängenden

Steinpartien in ein Gemisch von Salzsäure und Alkohol bringen,

oder besser in Flemming’sche Lösung, die man häufig wechselt, und

die zugleich fixirt. Vortheilhaft ist es, die Haftscheibe, wenn es auf

den Zellinhalt nicht ankommt, vor dem Schneiden noch mit Fluss-

säure zu behandeln, welche etwa versteckte Quarzkörnchen löst und

durch Entfernung der Bacillarienschalen das unterste Gewebe klarer

macht.

Die Zellen des Prothalliums sind cylindrisch, selten rund, meist

gerade, selten gebogen, durchschnittlich so breit wie die Basalzellen

der Haare (12—20 «) und 1", bis 7 mal so lang. Dann und wann

trifft man im Verlauf des Fadens bedeutend verbreiterte Zellen. Alle

enthalten einen Zellkern. Die Zellhaut ist verhältnissmässig dünn,

zeigt Cellulösereaction und ist scheinbar ohne Verbindungskanäle in

den dünnen Zwischenwänden. Die Oberfläche des Plasmas ist be-

deckt mit vielen, sehr kleinen, plattenförmigen Chromatophoren, die

zwar sehr dilut gefärbt sind, aber doch den Faden viel gefärbter

machen als die Markfäden es sind, und von derselben Nuance wie

die Haare. In die Vertiefungen des Substrates senden die Zellen

Ausweitungen ein. Rhizoide, die etwa in den Stein eindringen, sind

keine vorhanden. Die Funktion der Anheftung übernimmt, wie

schon erwähnt, der ausgeschiedene kohlensaure Kalk.

Ich habe nun die Entwickelung des Prothalliums von der Spore

bis zur Bildung der bekannten Thoreasprosse ziemlich genau ver-

folgen können.

Die an den Haarbüscheln des Stämmchens entstandene und

ausgeschlüpfte Monospore rundet sich zunächst ab, Tab. I Fig. 13,

und beginnt sehr bald zu keimen. Sie treibt nach einer Seite

hin einen Keimschlauch®), der nach und nach das gesammte Proto-

plasma in sich aufnimmt, so dass die Spore selbst als leerer Ballon dem

Keimschlauche hinten anhängt. Tab. I Fig. 14—17. Der ursprüngliche

Zellkern jedoch scheint in der Spore zurückzubleiben, wenigstens

sah ich denselben einmal mit einem kleinen Reste der Chromato-

phoren noch in dem leeren Ballon, während die Ausstülpung sich

53) Nur einmal sah ich eine Spore, welche, wie eine Vaucheriaspore in

entgegengesetzter Richtung zwei Schläuche getrieben hatte. Einmal sah ich

auch hinter einem schon dreizelligen Keimschlauch die Spore noch mit leben-

dem Protoplasma angefüllt.

DE TG A E B: at TEE VE U

Untersuchungen über Thorea ramosissima Borvy. 21

schon durch eine Zellwand abgetrennt hatte und mit einem neuen

Kerne verschen war. Tab. I Fig. 16. Die so entstandene Zelle ist

gewöhnlich anfangs 10 « breit und verbreitert sich bis 15 «, die Länge

beträgt 30—42 u, oft ist sie ceylindrisch mit abgerundeten Enden, oft

bisquitförmig. Das Protoplasma ähnelt vollständig dem der Zelle

eines Assimilationshaares.

Diese Zelle theilt sich nun bald der Quere nach und durch

successive Theilungen wächst sie zu einem wenigzelligen, unver-

zweigten Faden aus, welcher auf dem Substrate hinkriecht, und der

sich von einem ÄAssimilationshaar nur durch die etwas grössere Dicke,

die vielfach abgerundeten und bisquitförmigen, oft plötzlich ausge-

weiteten und überall ziemlich gleichlangen Zellen unterscheidet. Die

leere Spore hängt ihm vielfach noch hinten an, meist jedoch nur

noch Rudimente derselben. Tab. I Fig. 12.

Dieser Faden treibt nun ebenso gestaltete Seitenzweige; der

erste Zweig entsteht, wie mir scheint, fast immer am oberen Ende

der zuerst entstandenen Zelle, die übrigen unregelmässig. Die

Zweige senden neue Zweige aus, und so entsteht ein oft dichtes,

oft sehr lockeres Geflecht, welches zuerst einschichtig und später

meist mehrschichtig ist, das oben bezeichnete Prothallium. Die An-

fänge desselben bis zu den ersten Verzweigungen erhielt ich durch

Kultur, ausgebreitetere Zustände fand ich in meinem Materiale.

Dieses Prothallium sendet nun zuerst kurze, aufwärts gerichtete

Fäden, die zwar auch chantransiaartiger Natur, doch von den oben

beschriebenen deutlich verschieden sind. Sie sind anfänglich meist

unverzweigt, später erhalten sie oft kurze Aestchen, ihre Zellen sind

meistens so dick wie die des Prothalliums (12—18 u), meist nur so

breit als lang oder nur 1!/; mal länger (gewöhnlich haben auch die

Prothalliumszellen in diesem Zustand nur diese Länge); in den jüngeren

Stadien (an kleinen Fäden) sind sie an den Enden vielfach ein-

seschnürt, im Alter oft eylindrisch. So sind sie von den beschriebenen

Chantransien auf den ersten Blick verschieden. Tab. I Fig. 19 u. 20.

Ich trat diese läden zuerst meist in geringer Zahl in den aus-

gebildeten Haftscheiben sowohl am Rande derselben in noch leben-

dem Zustande, als auch abgestorben in der Mitte, wo sie (stets

direkt vom Prothallium ausgehend) das gewundene Geflecht der Mark-

fäden in gerader Linie durchbrechen, und dadurch und durch ihre Dicke

sehr hervorstechen. Dies Vorkommen zeigte mir, dass sie direkt

zum Aufbau des Sprosses nichts beitragen, dass sie also eher zum

Prothallium zu rechnen sind, und vielleicht als „aufsteigende Pro-

‚thalliumfäden“ angesehen werden können. Doch einmal sah ich,

wie aus dem obersten Theile eines solchen ein gewöhnlicher Chan-

transialaden als Seitenast sich abzweigte, und bald bemerkte ıch

zwischen beiden alle Lebergänge.

a aa ne ii nz hin map = 2 Lösen An ui a Sal Ze 1 re A u ie

W, Schmidle.

Denn die weiterhin sich erhebenden Fäden sind zwar noch

kurzzellig, doch nicht mehr eingeschnürt, verzweigter und verdünnen

sich stetig. Auch die Zellen werden bei den späteren Fäden länger und

man trifft oft Fäden, die unten breit und kurzzellig sind, nach oben

doch verjüngte und verlängerte Zellen tragen und sich dort ver-

zweigen. Tab. I Fig. 11 und Tab. II Fig. 6 stellen solche Ueber-

gänge dar. Zuletzt entsprossen die charakteristischen Chantransien.

Diese bilden braune aufgewachsene Polsterchen, oft nur stecknadel-

kopfgross (mit Uebergangsfäden), oft rein ausgebildet 2-5 mm im

Durchmesser. Nach allen Seiten strahlen wie bei Ch. chalybaea

var. radians die Fäden aus und tragen vielfach Sporen an ihren

Enden. Zerzupft man das Polsterchen oder legt man feine Längs-

schnitte hindurch, so sieht man am Grunde (oft in starker Ent-

wickelung) das bekannte charakteristische Prothallium wieder, aus

welchem die Chantransien hervorgehen. Deren unterster Theil ist

oft schon dilut gefärbt mit schr gestreckten Zellen, die uns an das

charakteristische Aussehen der Markfäden erinnern, Tab. II Fig. 3.

Und sehen wir genauer zu, so finden wir in der That meist schon

von diesen einige ausgebildet, oft vom Prothallium ausgehend, meist

als seitliche Abzweigungen der Chantransien. Tab. II Fig. 8. Auch

einige aufsteigende Prothalliumsfäden fehlen nicht.

Das Entstehen der Haftscheibe ist nun unschwer zu verfolgen.

Die in dem schon dichten Chantransienbüschel neu aufspriessenden

Fäden und Seitenzweige werden farbloser, strecken, krümmen und

verknäueln sich, erhalten ganz das Aussehen unserer Markfäden,

und bilden so das beschriebene Gewebe des Fusses, welches Alles

„. umspinnt, was von Fremdkörpern (Bacillarien, Cladophoren) im ur-

sprünglich lockeren Büschel lag. Die Haftscheibe ist damit gebildet. >*)

Aus dieser sprossen nun die Stämmchen. Ueber ihre Ent-

stehungsweise kann ich nur Folgendes anführen. Schon aus dem

Umstande, dass sich ihr Gewebe völlig unverändert in das der Haft-

scheibe fortsetzt, kann auch auf dieselbe Entstehungsweise geschlossen

werden. Wir sehen denn auch in der That, dass von denjenigen

Chantransien, welche aus der Haftscheibe hervorragen, einige büschel-

54) Die Ursache dieser Veränderung der Chantransiafäden ist vielleicht

vorzüglich im Berührungsreize der gegenseitig sich berührenden Zellen im

untersten Theile des dichten Büschels zu suchen, vielleicht im Mangel an Licht,

vielleicht in Beidem. Soweit die Fäden das Gewebe überragen, sind sie, wie

gesagt, wieder Chantransien.

Dass das Gewebe umgekehrt wieder, ebenso auf die ursprünglichen Chan-

transien einwirkt, ist natürlich. Wir sehen deshalb auch an diesen oft in

ihrem unteren Theile dieselben. Veränderungen eintreten; oft jedoch durchsetzen

sie als unveränderte Chantransien das Gewebe, je nachdem ihre Zellen auf den

Reiz noch reagiren konnten oder nicht, oder je nach der Stärke des Reizes,

der sie traf, d, h, der Dichte des durchwachsenen Gewebes.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. 23

weise nach derselben Richtung stärker wachsen. Ihre unteren Zellen

erfahren nun genau dieselben Veränderungen, wie früher unten am

Prothallium. Und so erhebt sich der junge Spross über die Haft-

scheibe, von den Chantransien anfangs allseits umgeben und über-

ragt. Oft waren es nur wenige Fäden, die den ursprünglichen

Büschel bildeten, und oft dazu noch solche, die unten in der Haft-

scheibe kaum verflochten waren. Die so entstandenen Sprosse sitzen

dann scheinbar auf Hohlräumen der Haftscheibe auf, oder auf Haft-

scheiben, die überhaupt ein schr lockeres Gewebe haben. An solchen

Sprossen ist dann besonders die reichliche Verzweigung der wenigen

Bildungsfäden leicht sichtbar, die im untersten Theile der Spross-

basis eintrat und zur Bildung des Sprosses führte. 5?)

Es sind also bei Thorea drei Entwickelungsstadien vorhanden,

das Prothallium, das Chantransiastadium und das der ausgebildeten

Thorea. Der Zusammenhang aller drei ist unschwer zu konstatiren,

denn an vielen vornehmlich jungen und sorgfältig mit den Haft-

scheiben abgelösten Exemplaren sind sie dann und wann direkt

in Verbindung zu sehen. Am Rande trifft man allein das

kriechende Prothallium, durch deren seitliches Wachsthum die Scheibe

sich vergrössert. Aus derselben erheben sich weiter einwärts zuerst

die aufsteigenden Prothalliumfäden, weiter einwärts die Chantransien

mit dem Geflechte der Markfäden, welches zuerst dünn nach der

Mitte zu immer dicker wird und dort die Thoreasprosse entsendet.

Es muss jedoch auch betont werden, dass man neben diesem

Zusammenvorkommen die beiden ersten auch vereinzelt antrifft.

Kriechende Prothalliumfäden überziehen die Steine als stahlblauer

oder bräunlicher Anflug oft auf grössere Strecken, die Chantransien

und das aufsteigende Prothallium bildet braune oder schwärzlich-

blaue aufgewachsene Polsterchen, wie sie in meinem Matcriale, wenn

auch nur selten, zu finden waren. Und es scheint mir gewiss, dass

unsere Alge lange Zeit hindurch in diesen Zuständen leben und

sich vermehren kann. Bei den Chantransien sind die Sporen schon

beschrieben, und die Beschreibung der Vermehrungsorgane des

Prothalliums folgt unten. Im Jahre 1893 waren ferner die Lokalitäten,

die das Jahr vorher und jetzt mit Thorca reichlich bestanden waren,

mit Chantransienpolster bedeckt. Ich schenkte ihnen freilich damals

wenig Beachtung, bin aber jetzt vielleicht berechtigt, sie mit

Thorea in Verbindung zu bringen. Dann aber sind diese Zustände

nicht mehr als vorübergehende Entwickelungsstadien anzusehen,

sondern als länger dauernde Vegetationsformen.

>», Leider velangs mir nicht, die Entstehung der ersten Haarbüschel im

jungen Spross zu verlolgen. An ausgewachsenen jedoch erkennt man hier be-

sonders deutlich, dass sie seitlich von den Markfäden, die aus dem Fusse kommen,

abzweigen. Eneständige Büschel habe ich hier dagegen keine beobachten können,

24 W. Schmidle.

Die Aehnlichkeit der Entwickelung von Thorea mit derjenigen

von Batrachospermum liegt auf der Hand. Trotzdem war ich, als

mir endlich Sirodot's’®%) Arbeiten zugänglich wurden — ich hatte

das Meiste von Thorea schon lange festgestellt —, nicht wenig über-

rascht, selbst in Einzelheiten fast volle Congruenz constatiren zu

müssen. Ich erwähne in dieser Hinsicht nur die Sporenkeimung,

die Ausbildung des Prothalliums mit kriechenden und aufsteigenden

Fäden, die Variabilität desselben hier wie dort und die Chantransia-

formen. Die Beschreibung des Prothalls von Batrachospermum

pyramidatum Sirodot ?°) passt Wort für Wort für unsere Haftscheibe

mit ihren Chantransiafäden. Der Umstand, dass Sirodot dieses

Gebilde zum Prothallium rechnet, ist deshalb nicht erheblich, weil

er selbst an verschiedenen Orten bemerkt, dass es unsicher sei, ob

es als Chantransia oder als Prothallium anzusehen sei. Die Ab-

bildungen Sirodot'’s des Prothalliums von Batrachospermum radians

Tab. 22 Fig. 12, von B. helminthosum Sir. Tab. 28 Fig. 8 und B.

elegans Sir. Tab. 44 Fig. 5 stimmen genau mit vielen Zuständen

des meinigen. Auf Pl. 38 Fig. 1 ist auch sein macroscopisches

Aussehen im kriechenden Zustande gezeichnet. Dieselbe Tafel zeigt

in Fig. 3 eine Chantransia mit einem Stücke ihres Prothalls wie

auch ich es fand. Die Zeichnungen der Keimung auf Tab. 44

Fig. 1 und 6 oder bei Solms-Laubach ’®) gelten auch hier u. s. w.5®)

Es ist wohl natürlich, dass bei solchen Uebereinstimmungen der

Gedanke nahe liegt, es möchte Thorea nur eine weitere, selten ein-

tretende Vegetationsform von Batrachospermum sein. Die Möglich-

keit ist nicht abzuleugnen, doch liegen auch Differenzpunkte vor.

Ich erwähne hier einmal die Zellgestalt des liegenden Prothalliums.

Wenn nämlich dieses auch in den ersten Entwicklungsstadien Zellen

hat, die denjenigen bei den erwähnten Batrachospermen vollständig

gleichen, so gilt dieses doch nicht immer von demjenigen der Haft-

scheibe. Meist sind sie hier (Ausnahmen kommen jedoch genug

vor) cylindrisch und viel länger, als Sirodot sie bei irgend einer Art

gefunden. Sporulen ferner habe ich nie auf dem Prothall gesehen.

Doch auch Sirodot beschreibt ihr Vorkommen nur bei wenigen

Arten.) Beachtenswerth ist ferner, dass bei Thorea die drei Vege-

56), Sirodot: Les Batrachospermes. Organisation, fonctions etc.,; Paris 1884.

#) Sirodot |. c. pag. 110.

5) Solms-Laubach: Bot. Zeitung 1867; Tab. IV Fig. 21.

5) Es ist wohl nöthig, hier zu betonen, dass niemals, weder von mir noch

von F. Förster, an den Fundstellen von Thorea Batrachospermum- Arten, die

sonst in’s Auge fallen, beobachtet wurden,

6) Bei Batr. pyramidatum Sir., dessen Prothall mit dem Thorea-Fuss die

grösste Aehnlichkeit hat, fand Sirodot Sporen auf dem Prothall, die den Mono-

sporen der Thorea merkwürdig ähneln und noch dazu wie bei diesen auf

kurzen ganz ähnlich aussehenden Fäden stehen.

Untersuchungen über Thorea ramosissima Borv. >5

tationsformen viel enger miteinander verknüpft sind, als dieses bei

Batrachospermum der Fall zu sein scheint. Dasselbe Prothall trägt

hier Chantransıa und Thorea, was dort nur selten vorkommt. Der

wesentlichste Unterschied liegt jedoch darin, dass dort die Batracho-

spermum-Form, hier das Prothallium schon die Cystocarpien trägt,

die freilich denjenigen von Batr. wieder sehr ähnlich sind, wenn sie

sich auch wesentlich unterschieden.

Wenn wir andererseits die aus dem Baue des Thoreasprosses

gewonnene Vorstellung zu Hilfe nehmen, dass dieselbe als ein

Konglomerat cinzelner Pflänzchen, der Haarbüschel, aufzufassen

sei, so ist diese Vorstellung jetzt wohl dahin zu erweitern, dass

diese Haarbüschel redueirte Chantransien darstellen. Der ganze

Spross erscheint dann als Konglomerat veränderter Chantransien,

die Thorea als eine Vevetationsform dieser Pflanze und von dem

ursprünglichen Chantransiapolster nicht wesentlich verschieden.

Dann ist immerhin die Erwartung berechtigt, dass aus dem ursprüng-

lichen Chantransiapolster bei geänderten Bedingungen statt der

Thorea ein Batrachospermum hervorgehen kann, zumal der Bau der

Zellen von dem des Thoreahaares nicht wesentlich verschieden ist.

Ich hoffe, dass Versuche mir dieses noch bestätigen.

Jedenfalls sind beide sehr nahe verwandt trotz des

scheinbar verschiedenen Baues.

Ich komme nun zur geschlechtlichen Fortpflanzung. Leider ist

mein Material nicht derartig, um über alle Punkte derselben in's Klare

gekommen zu sein. Die erste Anlage und die Entwickelung des

Cystocarpes, die für das Verständniss seines Baues von grosser

Wichtigkeit sind, habe ich in ihm noch nicht gefunden; Antheridien

habe ich auch noch keine geschen. Denn man ist bis jetzt bei der

Erlangung fructificirender Exemplare nur auf den Zufall angewiesen,

da das fertile Prothallium keine macroscopischen Merkmale zeigt.

So habe ich trotz der grossen Zahl durchschnittener Haftscheiben

nur sehr wenige noch mit den von mir so gedeuteten Organen

gesehen. Ich glaube trotzdem in der Deutung dieser Organe nicht

fehl zu gehen.

Die von mir als Cystocarpien angesehenen Gebilde scheinen

ausnahmslos an den Enden der kriechenden Prothalliumfäden sich

zu bilden und ihr horizontales Wachsthum abzuschliessen. Man

findet sie deshalb vorzüglich am Rande der Haftscheiben, woselbst

aufsteigende Prothalliumfäden fehlen, doch glaube ich sie auch an

solchen Prothallien gesehen zu haben, die überhaupt noch keinen

Fuss, auch nicht eınmal die aufsteigenden Prothalliumfäden gebildet

Bi a en Fr A a ee

rin. Se

- "u W. Schmidle.

hatten. Zur Bildung scheinen nur die Endzellen und deren Nachbar-

zellen beizutragen. Dieselben sind kurz und scheinen grosse Zellen

seitlich abzusprossen, die durch Theilung weiter sich vermehren.

Tab. I Fig. 21 u. 22; vergl. Figurenerklärung.

So sieht man zuletzt das Fadenende mit einem Haufen unregel-

mäsig gelagerter oder nur undeutlich radial gestellter Zellen umgeben.

Tab. I Fig. 23—31; vergl. Figurenerklärung. Im Centrum desselben

sind sie relativ gross und von unregelmässiger Gestalt. Ihre Zellhaut

ist dünn, der Zellinhalt ist schwach gefärbt, stahlblau oder bräunlich

und wie mir scheint, durchweg homogen; mit Haematoxylin sind sie

kaum färbbar. Eine Centralzelle konnte ich bei gut durchschnittenen

Haufen einigemal bemerken, die entweder durch ihre Grösse oder

etwas stärkere Färbbarkeit hervorragt, Fig. 29. Ihre Gestalt ist rund-

lich, desgleichen auch vielfach die der zunächstliegenden Zellen,

doch sind diese auch häufig flaschenförmig (der Hals ist einwärts

gewendet) oder länglich, oder derart, dass sie gegen die Peripherie

zu verbreitert und dort deutlich eingebogen sind (also herzförmig)

Fig. 24, 25 u. 29. Weiterhin werden sie kleiner, meist ziemlich

plötzlich. Von diesen kleineren Zellen gehen dann vereinzelte Zell-

fäden aus, die aus ebensolchen kleinen runden oder länglichrunden

Zellen sich rosenkranzartig zusammensetzen und oft wieder reichlich

verästelt sind. Tab. I Fig. 26—29, 31. An den Spitzen dieser Fäden

sind die Zellen wieder merklich grösser. Im Gegensatz zu den-

jenigen des Haufens werden die Fadenzellen überaus stark mit

Haematoxylin gefärbt, viel stärker als sonst ein Theil der Thorea.

Den bekannten Fruchtfäden von Batrachospermum, wie sie von Sirodot,

Solms-Laubach und Thuret gezeichnet sind, gleichen unsere Fäden

zum Verwechseln und ich glaube auch berechtigt zu sein, sie für

Fruchtfäden zu halten. Wir hätten es dann mit einem Cystocarp zu

thun, welches aus einem zum Prothallinm endständigen Kern besteht

(dem beschriebenen Haufen grosser Zellen), aus welchem die zer-

streuten Fruchtästchen strahlig frei herausragen.

Die Vermuthung, dass das’ geschilderte Organ ein Cystocarp

darstellt, wird wesentlich dadurch bestätigt, dass es mir gelungen ist,

das Trichogyn zu finden. Dasselbe besteht aus einem sehr langen,

dünnen, einzelligen Haar, das völlig farblos ist und mit nur schwach

färbbarem Protoplasma angefüllt. An der Spitze ist es abgerundet

und ich sah hier einmal seitlich eine kleine runde, mit Haematoxylin

stärker gefärbte Anschwellung, wie sie bekanntermaassen erscheint,

wenn das Trichogyn mit dem Antheridium verschmilzt. Tab. I

Fig. 30. Dieses Trichogyn verschwindet regelmässig in dem ge-

schilderten Kerne, Tab. I Fig. 23-26, und an zwei guten im Centrum

zerschnittenen Exemplaren konnte ich constatiren, dass sie mit der

mittelsten Zelle in Verbindung steht. Tab. I Fig. 24. Bemerkens-

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Untersuchungen über Thorea ramosissima Borv. 27

werth ist wohl, dass ausnahmslos an solchen Kernen die Fruchtfäden

noch fehlten.

Mir scheint, dass diese Beobachtungen uns berechtigen, die ge-

schilderten Organe für Uystocarpien zu halten, ohne ihre Entwickelung

und Befruchtung noch venau zu kennen.

Ich muss hier noch cine Erscheinung erwähnen, die ich an

Prothalliumfäden sah, und die kaum anders wenn nicht als Tetra-

sporenbildung zu erklären ist.

An kurzzelligen Prothalliumfäden, Tab. I Fig. 5, die noch

keine Haftscheibe getrieben, und in einem Falle an solchen mit nur

aufsteigenden Prothalliumfäden, Tab. I Fig. 11, bemerkte ich häufig

runde Zellen, deren Inhalt in eine Menge kleiner, stahlblauer, schwach-

gefärbter Körperchen zerfiel, die nach Auflösung der Zellhaut heraus-

fielen. Tab. I Fig. 6. Und da dieses gewöhnlich an vielen Zellen

zugleich geschah, so entstanden meistens grosse Haufen solcher blos

2—4 u grosser runder Zellchen. Sie wuchsen rasch heran (Tab. |

Fig. 7a u. b.) und erreichten die Grösse abgerundeter in's Wasser

gefallener Sporen. Einmal sah ich, wie eine solche Zelle ihre Haut

abwarf, um wahrscheinlich zu keimen, Tab. I Fig. 8.

Zum Schlusse ist es mir noch eine angenehme Pflicht, Herrn

Professor Askenasy in Heidelberg, Herrn Dr. Max Lange in Baden

sowie Herrn Pfeiffer von Wellheim in Wien für ihre liebenswürdige

Unterstützung meinen besten Dank zu sagen,

Herr Pfeiffer von Wellheim und Herr F. Förster hatten ausser-

dem die Güte, mir die Resultate ihrer Thoreauntersuchungen zur

Verfügung zu stellen. Ich gebe dieselben anhangsweise dieser

Arbeit bei.

Anhang I.

Ueber die Tinction und den Zellbau unserer Alge schrieb

mir Herr Pfeiffer von Wellheim Folgendes:

„Was die Sporen von Thorea und ihren Inhalt anbetrifft, so

habe ich Folgendes beobachtet:

1. den Kern. Derselbe liegt ziemlich in der Mitte der Spore

und wird gut sichtbar bei Hämalaun-Tinction, sowie bei Echtgrün-

Kernschwarz-Präparaten (mit oder ohne Magdalaroth-Nachfärbung). —

Der Kürze halber sage ich immer: „Echtgrün“, „Gallussäure“ oder

„Gallöin“, auch dort, wo es vollständig: „Eisenchlorid - Echtgrün“,

Eisenchlorid-Gallussäure“ oder „Eisenchlorid-Gallein‘‘ heissen sollte.

2. wandständige, in Mehrzahl vorhandene, unregelmässig ge-

formte, nicht immer scharf gegen das übrige Plasma begrenzte

Inhaltskörper, welche besonders deutlich bei Echterün-Kernschwarz-

Färbung hervortreten. Tab. II Fig. 5 u. 9.

28 W. Schmidle.

Ob dieselben, wie ich annehme, Chromatophoren sind, deren

Tinctionsvermögen entgegen den anderen Chromatophoren einige

Abweichung aufweist, lässt sich wohl nur durch Beobachtungen bei

der Keimung feststellen.

Gallöinfärbung konnte nicht verwendet werden, weil Gall&in-

lösung Plasma und Chromatophoren bei Thorea ungünstig beeinflusst.

Während bei gut gelungener Echtgrün-Kernschwarz- oder bei Gallus-

säure-Färbung die in den vegetativen Fäden etc. vorhandenen

Chromatophoren sich schön tingiren, das Plasma dagegen schwach

oder gar nicht Farbe annimmt, färben sich bei Galläintinction die

gequollenen Chromatophoren fast gar nicht, hingegen stark das Plasma.

Es entstehen dadurch eigenthümliche Bilder, welche den anderwärts

erhaltenen — ich bezeichne dieselben als positive — als negative

an die Seite gestellt werden können. Tab. III Fig. 8.

Ich habe vorher eine Echtgrün-Kernschwarz-Magdalarothfärbung

erwähnt.

Da meinerseits über diese Methode bisher nichts publicirt wurde,

so skizzire ich dieselbe hier kurz:

Die nach gewöhnlicher Art mit alkoholischem Eisenchlorid-Echt-

grün gefärbte Alge wurde wieder in destillirtes Wasser gebracht und

nach gänzlicher Verdrängung des Alkohols in eine concentrirte

Kernschwarzlösung (bezogen von Dr. G. Grübler in Leipzig) gelegt,

in welcher dieselbe mindestens eine Stunde lang verblieb. , Hierauf

folgte gründliches Auswaschen mit destillirtem Wasser, Uebertragen

in das 10°, Glyceringemisch, Anwendung des Glycerinverfahrens,

wie es in meiner Arbeit: „zur Präparation der Süsswasseralgen‘“ be-

schrieben ist, um die Alge in 95 %, Alkohol zu bringen und schliesslich

das Terpentin-Einschlussverfahren, mit oder ohne Magdalaroth-

Nachfärbung.

Nun zur Frage der Plasmaverbindung.

Wenn Thorea ohne Vorbehandlung, sei es frisch oder fixirt, in

Wasser oder verdünntem Glycerin liegend, untersucht wird, so

habe auch ich meist nur dasjenige gesehen, was bereits Professor

Schmitz sah.

In besonders günstigen vegetativen Zellen fand ich bisweilen

nach starker Hämatoxylinfärbung Bilder, welche annehmen liessen,

dass die einander zugewendeten, an der Basis manchmal knöpfchen-

förmig verdickten Plasmakegelchen, nicht blos an die Querwand

herantreten, sondern diese letztere perforiren, da das Plasma des

einen Kegels mit dem anderen vereinigt schien und eine Trennungs-

linie nicht zu sehen war.

Wird gut fixirtes Material mit Echtgrün-Magdalaroth oder nach

vorerwähnter Methode mit Echtgrün-Kernschwarz gefärbt, so erhält

Untersuchungen über Thorca ramosissima Borv. 29

man scharfe Färbungen, welche durchwegs solche Bilder zeigten,

aus welchen die Durchbrechung der Querwand hervorzugehen schien.

(Tab. III Fig. 4a.)

Ungeachtet dieser Bilder erregte aber der Umstand Bedenken,

dass die Quetschung solcher vegetativer Fäden oft eine Verschiebung

der Plasmaspitzen, aber fast stets nur an der Querwand zur Folge

hatte. (Tab. III Fig. 4b.)

Es entstand damit die Frage, ob nicht die beiden Spitzen, ohne

die Querwand zu perforiren, lediglich an eine aus eigenthümlicher

Substanz bestehende Stelle (Tüpfel) derselben ansetzen, welche sich

mit den verwendeten Tinctionsmitteln gerade so, wie das Plasma

selbst, färbt, und dadurch dem Auge ein direktes Ineinandergehen

vortäuschen.

Um dies zu entscheiden, wurde fixirtes Thorea-Material in die

käufliche, zur Tlälfte mit destillirtem Wasser verdünnte Kau de

Javelle-Lösung gebracht. Nachdem dieselbe einige Stunden (die

richtige Dauer muss ausprobirt werden) eingewirkt hatte, wurde das

in Theilchen zerfallende Material gründlich mit destillirtem Wasser

gewaschen, mindestens eine Stunde lang in concentrirter Kernschwarz-

lösung gefärbt und nach neuerlichem Auswaschen, Eintragen in die

10°, Glycerinmischung, Concentrirung derselben, Ueberführen der

Alge in Alkohol und Uebertragen nach bekannter Methode in vene-

tianischen Terpentin in letzteren eingeschlossen.

Gut behandeltes Material zeigt (Tab. III Fig. 6 u. 7) die ver-

bindenden Plasmatheile gänzlich gelöst, das eigentliche Zellplasma

dagegen, wenngleich stark deformirt, grösstentheils erhalten. Die

Zellwände sind gequollen.

In den Querwänden der vegetativen Haare (Fäden), welche

diese Verhältnisse am besten erkennen lassen, ist nunmehr genau

an der früheren Durchbruchsstelle ein durch Kernschwarz intensiv

gefärbtes, scharf begrenztes, gleichfalls gequollenes Scheibchen sicht-

bar geworden, welches sich im Punkte der Färbung ähnlich zu ver-

halten scheint, wie der stark gefärbte Verbindungsreif, welcher die

Querwände je zweier anstossender Zellen, hauptsächlich der längs-

und querverlaufenden Fäden, umgiebt.

Auch in den Querwänden der Zellen der Zweigbüschel, der

Sporangien, der längs- und querverlaufenden Fäden sind diese Tüpfel

vorhanden. Nur sind dieselben wegen der Rleinheit der Verhältnisse

oder wegen des stark gefärbten, vorerwähnten Verbindungsreifes

schwerer zu sehen und muss man im Präparate oft länger nach

ihnen suchen.

Mit der Sichtbarmachung dieses geschlossenen Tüpfels ist wohl

der Nachweis geliefert, dass ein Durchbruch des Plasmas durch die

Querwand bei Thorca nicht stattfindet.

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30 W. Schmidle.

Ob eine Function und welche der Tüpfel gegenüber dem Zell-

plasma auszuüben hat, ist damit natürlich nicht dargethan. Mir

scheint es jedoch zweifellos zu sein, dass seine Substanz erhöhte

Durchlässigkeit für gewisse Stoffe besitzen dürfte, welche der Pflanze

zur Lebensthätigkeit nöthig sind, und für diese Stoffe eine direkte

Plasmaverbindung ersetzt,“

Anhang II.

Herr F. Förster hatte, wie er mir soeben mittheilte, folgende

Reactionen des wasserlöslichen Farbstoffes beobachtet:

„l. Essigsäure vernichtet die Fluorescenz, die Färbung wird

rothblau, getrübt, nach kurzem Stehen erfolgt ein blauer Niederschlag.

Die filtrirte Lösung ist farblos.

2. Eine Spur Ammoniak färbt den Auszug rosenroth, eine grössere

Menge macht ihn farblos. Säurezusatz bewirkt wieder eine röthliche

Farbe ohne Fluorescenz.

3. Baryumhydrat in geringer Menge zugesetzt giebt einen

flockigen Niederschlag, die Lösung wird rosa mit gelblicher Fluores-

cenz. Grössere Mengen machen sie farblos, der reichlichere Nieder-

schlag wird im Filter mit Salzsäure benetzt blauroth.

Bei Kalilauge entsteht eine rothe Trübung, dann wird die

Lösung braunroth, ®!) dann farblos. Wird Essigsäure zugesetzt, so

wird die Lösung roth, ihr Filtrat wieder farblos und der Rückstand

roth oder braunroth. Wird Salpetersäure zugesetzt, so entsteht eine

blaurothe Färbung, das Filtrat ist abermals farblos, der Rückstand

roth bis blauroth. Die Färbung rührt also in beiden Fällen allein

vom suspendirten Niederschlag her, wie man auch bei längerem

Stehenlassen beobachten kann.

Kalkwasser bringt einen sehr schwachen Niederschlag kervor,

an welchem weiter nichts beobachtet werden konnte.

Bei Bleiacitat entsteht eine rosenrothe Trübung, filtrirt ist der

Rückstand schwach rosenroth gefärbt.

Wärme. Beim Erhitzen bis zum Sieden wird die Lösung

bräunlichroth und zuletzt entfärbt. Filtrirt man hernach, so bilden

die durch das Filter nicht hindurchgegangenen Bacterien einen

rosenrothen Schaum und erweisen sich bei microscopischer Betrach-

tung deutlich roth gefärbt. ®*)

6) Bei Anwendung unreiner (durch Korkholz verunreinigter) Kalilauge

erhielt auch ich genau dieselbe Reaction.

2) Durch den Nachweis, dass der Schaum aus Bacterien besteht, ist das

Verhalten, wie ich es oben schilderte, erklärt; s. oben: Pag. 5.

Fa Zu re

Untersuchungen über Thorca ramosissima Borv. 3]

Alkohol. Bei Zusatz geringer Mengen absol. Alkohols bleibt

die Fluorescenz erhalten, bei grösserem verschwindet sie. Die Lösung

wird rothblau und trüb. Steigert man den Alkoholzusatz bis er

quantitativ der Lösung gleichkommt und filtrirt, so ist das Filtrat

farblos. Der Rückstand gleicht dem 3-Phycoerythrin nach Schütt. ®>)

Die Lösung wird erhalten, indem Thorea in grossen Mengen in

ein Gefäss gebracht wird, dessen Wasser nicht erneuert wird. Nach

wenigen Tagen beginnt sie zu faulen, welcher Prozess durch Fr-

höhung der Temperatur beschleunigt wird. Gleichzeitig mit dem

Eintritt der Fäulniss, die an dem Erscheinen von Rahmhäuten an

der Oberfläche kenntlich ist, nimmt das Wasser im auffallenden Lichte

eine prächtig rothe, im durchfallenden eine hämatoxylinblaue

Färbung an.“

Figurenerklärung.

Sämmtliche Figuren der Tafeln I und II sind mit dem Abb&'schen Zeichen-

apparate entworfen und photoggaphisch verkleinert) und zwar die von Tab. I

mit bei Anwendung des Zeiss'schen Occulars 5 und Objeetivs DD, die von

Tab. II bei demselben Objeetiv und dem Oceular 2.

Die Figuren von Tab. II sind Freihandzeichnungen.

Tal. I.

Fig. 1. Einzellige Anlage eines Haarbüschels im untersten Theil des Sprosses.

Fig. 2. Aus einem Markfaden entkeimt bei a die zweizellige Anlage cines

solchen, bei b ist cin rudimentäres Büschel desselben Markfadens,

welches nur aus einem Sporenhaar (mit der Spore) besteht und bereits

einen neuen Markfaden ce in den Stamm entsendet.

ig. 3. Rudimentäres lHaarbüschel aus dem untersten Stammtheil. Bei a sind

die Basalzellen, die Continuität des Protoplasmas in der Fadenzelle

beweist wohl die seitliche Sprossung.

Fig. 4 Endständiges llaarbüschel im untersten Stammestheil mit 2 jungen

Haaren b und b! und einem entwickelten c. Kin absprossender, noch

kurzzelliger Markfaden trägt die Anlagen zweier neuen Büschel

a und at,

Fig. 5. Stück eines Prothalliums, dessen unterste Zelle sich in kleine Zellchen

getheilt hat (Tetrasporenbildung?).

Fig. 6. Theil eines Ilaufens solcher, jedoch freigewordener Zellchen bei a;

bei b dieselben gewachsen.

Fig. 7. Dieselben Zellen, vollständig erwachsen.

Fig. 8. Der Inhalt tritt aus einer solchen Zelle heraus,

Fig. 9 und 10. End- und seitenständige Sporen einer Chantransia aus dem

Fusse einer Thorea.

Fig. 11. Aufsteigender Prothalliumfaden b im Uebergang zur Chantransia,

mit dem Prothallium a, dessen Endzellen, wie in Fig. 5 in Zellchen

zerfallen sind (aus einem Entwickelungszustande).

63) Wie man sicht, stimmen diese Reactionen in der Hauptsache genau mit

den meinen.

A ei, ui an Ka al

Fig.

19;

SU;

sl,

W. Schmidle.

4zelliger Keimungszustand einer Monospore (bei a ihre leere Haut).

Monospore, die zu keimen beginnt. Die Zellhaut ist von Gallerte

umgeben.

. 14, 15, 16, 17. Aufeinander folgende Keimungszustände einer solchen.

. 18.

Stück eines in’s Wasser gefallenen Sporenhaares, welches weiter Sporen

bildet.

Stück eines Prothalliums mit einem aufsteigenden Prothalliumsfaden b,

einem keimenden c und einem Markfaden d. (Aus dem Fusse einer

Thorea.)

Aufsteigende Prothalliumfäden mit dem Prothallium (aus einem Ent-

wickelungszustande).

Ende eines Prothalliumfadens, aus dessen Zellen neue Zellen hervor-

sprossen, die die Anlage eines Cystocarpes bilden.

Weiterer Zustand. Die zweite Zelle ist verletzt und leer, trägt mehrere

Sprosszellen und scheint (in der Figur nach abwärts) eine neue abzu-

sprossen.

Weiterer Entwickelungszustand. Bei a wird eine farblose, langgestreckte

Zelle sichtbar, das Trichogyn.

Querschnitt durch ein Cystocarp ohne Fruchthaare, Die mittlere

Zelle setzt sich in das Trichogyn fort. Ihr Protoplasma ist durch eine

zarte Scheidewand (in der Figur nicht deutlich ausgedrückt) ab-

getrennt. “

Dasselbe.

Oberflächenansicht eines Cystocarps mit Trichogyn. Links aufwärts

beginnt ein Fruchtast zu Sprossen.

.27 und 28. Entwickelte Fruchtäste.

. 29,

Querschnitt durch ein Cystocarp mit grosser Centralzelle. Nach ab-

wärts entwickeln sich 2 Fruchtäste.

Ende eines Trichogyns, welches eine seitliche, protoplasmareiche An-

schwellung trägt, wie sie sich beim Anlegen des Antheridiums bildet.

Ein kleines Cystocarp in Oberflächenansicht mit entwickelten Frucht-

ästen an dem Ende eines Prothalliumfadens.

Tab. I.

Ein Chantransiafaden aus dem Fusse einer 'Thorea.

Ein Markfaden (Längsfaden) aus dem Längsschnitt eines Thorea-

stammes,

Unterer Theil eines Chantransiafadens aus dem Fusse einer Thorea.

Die unterste langgestreckte, blasse Zelle verschwindet im Gewebe

des Fusses.

Ein in’s Wasser gefallenes Assimilationshaar, aus welchem seitlich

kriechende Prothalliumfäden hervorgesprosst sind.

Stück eines ausgebildeten kriechenden Prothalliums aus dem Fusse

einer Thorea.

Bei a ein Prothalliumfaden aus einem Entwickelungszustande, aus

welchem zwei reichverzweigte Chantransien aber mit noch kurzen,

eingeschnürten Zellen (Uebergang zum aufsteigenden Prothallium)

hervorsprossten.

Ein ins Wasser gefallenes Haarbüschel, dessen Markfäden b abgestorben

sind und aus dessen Basalzellen dafür kriechende Prothalliumfäden a

hervorzusprossen beginnen.

Wenn Er TE

Untersuchungen über Thorea ramosissima Bory. 33

Fig. 8. Aus dem Prothall c ist eine Chantransia hervorgesprosst, deren zweit-

unterste Zelle nach abwärts einen Markfaden entsendet. (Aus einem

Entwickelungszustande.)

Tab. II.

Fig. 4—9 sind von F. Pfeiffer von Wellheim gezeichnet, Fig. 2 und 3 von

F. Schmidle.

Fig. 1. a Spectrum des Thoreafarbstoffes, bei einer Schichtendicke von 25 mm:

b, c, d, e dasselbe bei einer solchen von 25 mm in aufeinanderfolgen-

den Verdünnungen der Lösung, f dasjenige der durch Säure ver-

änderten Lösung.

Fig. 2. Längsschnitt mit einem Seitenästchen; a die Assimilationshaare, b die

Randzone, ce die Zwischenschicht, d die Markzone.

Fig. 3. Theil eines Längsschnittes durch einen ausgebildeten Fuss; a das

Prothallium; bei b Beginn des Stämmchens.

fig. 4. Vegetativer (freier) Faden; Echtgrün - Kernschwarz - Magdalaroth-

Präparat °%/,.

Fig. 5. Spore; Echtgrün-Kernschwarz-Präparat. ®%/,.

lg. 6. Zweigbüschel; Eau de Javelle-Präparat, mit Tüpfeln an den Quer-

wänden. #50

—

eis

ie!

Vegetativer (freier) Faden, Eau de Javelle-Präparat mit Kernschwarz

gefärbt. 50%],.

Fig. 8. Gallöin- Präparat, freier Faden rn

Fig. 9. Echtgrün - Kernschwarz -Präparat;; Spore '30/,.

Hedwigia Bd XAAV. 1890. 3

NEE

Ernst Stizenberger.

Von Jos. B. Jack.

Einer schönen Sitte folgend, hervorragenden Pflegern und För-

derern der Naturwissenschaften, nach ihrem Ableben, in den Annalen

derselben durch eine Schilderung ihres Lebens ein Denkmal zu setzen,

sollen nachstehende Zeilen dienen.

Am Morgen des 27. September 1895 wurde durch einen Schlag-

anfall dem Leben eines solchen ein rasches Ziel gesetzt.

Dr. Ernst Stizenberger wurde am 14. Juni 1827 in Konstanz

als Sohn eines Arztes geboren. Er besuchte das Lyceum seiner

Vaterstadt und begann, nachdem er 1844 die Maturitätsprüfung be-

standen hatte, an der Universität Freiburg im Breisgau seine

akademische Laufbahn, wobei er als Fachstudium die Medicin wählte,

welche seiner Neigung für die Naturwissenschaften am besten ent-

sprechen musste. Im Herbste 1850 bestand er mit Auszeichnung

das Staatsexamen.

Schon während seiner Studienzeit hatte Stizenberger den

Naturwissenschaften, namentlich der Botanik, sein eifrigstes Interesse

zugewandt, er sammelte und beobachtete. Die erste wissenschaft-

liche Arbeit hat er „der Universität Freiburg zur Erlangung der

Doktorwürde in der gesammten Heilkunde vorgelegt“ unter dem

Titel: „Uebersicht der Versteinerungen des Grossherzogthums Baden.“

Freiburg 1851, — eine Schrift in Oktav von 144 Seiten, welche er

mit der Rechtfertigung einführt: „Wer die Gesetzmässigkeit, Harmonie

und Einheit in der Natur bewundern will, darf nicht verschmähen,

auch die scheinbar geringste Erscheinung in derselben genau zu

beobachten und zu verfolgen; denn nur die genaue Kenntniss all’

ihrer Theile führt zur Kenntniss des grossen Ganzen.“ .... „Es

ist die Aufgabe dieser Arbeit, die grosse Anzahl der Petrefakten

Badens in geordnetem Zusammenhange mit Angabe der Fundorte

aufzuzählen und so in übersichtlicher Form und als Ganzes das

wiederzugeben, was zerstreut in der Literatur, was noch unverzeichnet

in den grösseren geologischen Sammlungen unseres Landes vor-

handen ist.“

Nach Schluss seiner Studien an der Universität Freiburg besuchte

Stizenberger zu seiner weiteren Ausbildung die Universitäten Prag

a 5 ns ua in nee En . ” iu da u en

Ernst Stizenberger. 35

und Wien, denen sich damals die angehenden Mediciner mit Vor-

liebe zuwandten, um dann Ende 1851 sich in seiner Vaterstadt als

praktischer Arzt niederzulassen, welchem Berufe er daselbst bis an

sein Lebensende treu geblieben ist.

Nicht lange währte es, bis er seine Kenntnisse in der Richtung

seiner ersten wissenschaftlichen Arbeit auch weiter bethätigte, in

dem „Handbuch der Geologie von Dr. C. Fromherz“, Durch den

vorzeitig erfolgten Tod des Verfassers war die Vollendung des Werkes

unterbrochen, und es wurde Stizenberger von der hinterlassenen

Familie des ersteren 1856 mit der Vollendung und Herausgabe des

Buches betraut. Dies machte er möglich, indem er wesentliche Er-

gänzungen und Einschaltungen, ‚die durch vorhandene Lücken des

Manuscriptes geboten waren“ und welche im Vorwort des Buches

genannt werden, in dasselbe einführte.

Zur Geschichte dieses Werkes erzählt er uns, dass im Jahre 1847,

als er noch Student in Freiburg war, bei einer Wanderung, welche

er mit seinem damaligen Lehrer Professor Fromherz in die oberen

Jura-Ablagerungen bei Vögisheim im Breisgau machte, ihm letzterer

mittheilte, dass er sich mit Herausgabe eines Handbuches der Geologie

beschäftige und wie weit er mit dieser Arbeit schon gekommen sei.

Stizenberger’s erste Arbeiten auf botanischem Gebiete waren

(1854 und 1855) einige kleinere Aufsätze über Algen, 1858 über

Ephebe, dann folgte 1860 eine systematisch geordnete Aufzählung

der von L. Rabenhorst herausgegebenen Algen Sachsens resp.

Mitteleuropas mit Zugrundelegung eines von Stizenberger

entworfenen neuen Systems, welche Arbeit er seinem Freunde

Dr. L. Rabenhorst „in Liebe und Dankbarkeit widmet“. Er sagt:

„In Stunden, die mein Beruf nicht beansprucht, Erholung und Er-

heiterung bei der lieblichsten aller Wissenschaften suchend ist's

namentlich das Studium der Kryptogamen, das am innigsten mich

fesselt.“

Dieser Arbeit folgte im kommenden Jahre 1861 eine weitere

auf botanischem Gebiete, nämlich: „Versuch zur Bereinigung der

Terminologie für die Fortpflanzungsorgane der blüthenlosen Pflanzen“,

welche alle Klassen der Kryptogamen umfasst und auf reichen

speciellen Kenntnissen derselben basirt.

Von da ab wendet sich Stizenberger nun fast ausschliesslich

dem Studium der Flechten, das ihn für sein ganzes Leben gefangen

genommen hat, zu. Im gleichen Jahre (1861) folgen einige kleinere

Aufsätze, dann 1862 „Beitrag zur Flechtensystematik“. Er entwirft in

dieser Arbeit ein selbstständiges (eignes) System der Flechten.

Im Jahre 1863 beschenkt Stizenberger die Freunde der

Flechtenkunde erstmals mit einer grösseren Arbeit: „Kritische Be-

36 ]. B. Jack.

merkungen über die Lecideaceen mit nadelförmigen Sporen“. Dieselbe

ist begleitet von 2 Tafeln und erschien — 76 Seiten in Grossquart —

in den Verhandlungen der Leop.-Carol. Deutschen Akademie der

Naturforscher im Jahre 1864, in welche Gesellschaft Stizenberger

am 25. November 1863 als Mitglied aufgenommen worden ist,

Ausser einer kleineren Abhandlung, „Conspectus specierum

saxicolarum Generis Opegraphae“ in „Flora“ 1864, sehen wir im

November des gleichen Jahres wieder eine grössere Arbeit aus der

Feder unseres rastlos thätigen Freundes gleichfalls in den Verhand-

lungen der Kais. Leop.-Carol. Deutschen Akademie hervorgehen,

nämlich: „Ueber die steinbewohnenden Opegrapha-Arten“, mit zwei

Tafeln von Sporenzeichnungen geschmückt. (36 Seiten in Grossquart.)

Ebendaselbst erschien 1867 eineMonographie: „Lecidea sabuletorum

Flörke und die ihr verwandten Flechtenarten“, dann 1868 eine kleinere

Abhandlung: „De Lecanora subfusca ejusque formis commentatio“

(in der Botan. Zeitung). 1871 giebt Stizenberger ein Verzeichniss

der von Th. von Heuglin auf Nowaja Semlja gesammelten Flechten.

Abweichend von den bisher aufgezählten Arbeiten sind: „Bota-

nische Plaudereien über die Flechten“, — eine in erzählender, sehr klarer

und ansprechender Form populär geschriebene, mit durchaus wissen-

schaftlicher Grundlage verfasste Arbeit, in welcher 14 grössere Flechten-

arten besprochen werden, denen im Texte Abbildungen derselben

in natürlicher Grösse, sehr kenntlich dargestellt, beigefügt sind; einige

Durchschnitte von Früchten, sowie Sporen sind in vergrössertem

Maassstabe wiedergegeben.

„Kriegsbereitschaft im Reiche Floras“ wurde vom Verfasser in

der Hauptversammlung der Naturwissenschaftlichen Gesellschaft in

St. Gallen im October 1874 vorgetragen und in dem Berichte über

die Thätigkeit derselben 1873/74 gedruckt. Es ist eine geistvolle

Hinweisung auf die Mittel der Kriegführung resp. Vertheidigung bei

verschiedenen Kindern Floras. Er leitet sie ein mit den Worten:

„Wenn wir von den Drangsalen des Daseinkampfes gebeugt das

Gleichgewicht der Seelenfunktionen wieder herstellen wollen, wenden

wir uns hin zur Natur. Dort suchen wir Erbauung an dem Frieden,

an der Harmonie und Ordnung der Dinge. Ihr Spiegelbild dringt

in unser bewegtes Herz, und damit ziehen auch wieder Ruhe und

Frieden dorthin ein.“ Nach einem Blick auf die Störungen dieses

Friedens durch Erdbeben, Gewitter, das Wüthen grosser Raubthiere,

die Raubzüge der insektenfressenden Vögel sagt der Verfasser weiter:

„Will aber der Mensch das seinem Herzensbedürfnisse adaequatischste

Bild, ja das Ideal des Friedens, nach dem er so oft und so durstig

lechzt, sich formen, so schaut er hin zu Floras Reich: die duftigen

Kinder des Lichtes — die zarten Blüthen, das unschuldige Leben

Ernst Stizenberger. 37

der Pflanze, deren Innerlichkeit sich wohl am vollkommensten und

naivsten in ihrem äusseren Leibe darstellt, die schlanken geselligen

Halme der Gräser, das lispelnde Laubesgrün des Waldes, die ruhige

Majestät der Palmen sind ihm die am meisten sympathischen

Aeusserungen der Natur — der Oelzweig ist ihm Symbol des Friedens

und der Freundschaft.“ . . . Doch: ‚treten wir Alle ohne Bedenken

auch hin an die Wiegen der Kinder Floras: wir werden uns über-

zeugen, dass wir es mit würdigen Sprösslingen eines Kriegervolkes

zu thun bekommen‘,

In den „Berichten“ derselben Gesellschaft folgen 187475: „Index

lichenum hyperboreorum‘ und 187778: „Die ökonomischen Bezieh-

ungen der Flechten“, letzterer Aufsatz nach einem Vortrage, welchen

Stizenberger in der Hauptversammlung der Gesellschaft 1878

gehalten hat; in demselben schildert er in populärer Form, aber auf

ernst wissenschaftlicher Grundlage die Verschiedenheit des Vor-

kommens der Flechten, ihrer Wohnorte, ihres Nutzens etc.

Eine sehr umfangreiche Arbeit: „Lichenes helvetici‘‘ erscheint

in den gleichen „Berichten“ 1880 81, mit einer Fortsetzung im darauf-

folgenden Jahrgange. Das Werk bringt (in lateinischem Texte) ein

Verzeichniss aller damals bekannten Flechten der Schweiz, die

ganze Literatur von jeder einzelnen Art, nebst Angabe sämmtlicher

Fundorte und der Finder. Die Arbeit erstreckt sich auf 1343 Arten.

In den „Berichten‘‘ 188384 sehen wir eine populär geschriebene

Abhandlung über die durch den Wechsel der Jahreszeiten bedingte

Aenderung im Leben der Pflanze, ihr Anfang und ihr Ende unter

dem Titel: „Blätter, Blüthen und Früchte“. — In der ‚Flora‘ er-

scheint 1886: „Nachtrag zur botanischen Ausbeute der Novara-

Expedition“, eine Aufzählung von 29 Flechtenarten.

„Lichenes Insulae Maderae‘“ betitelt sich ein Verzeichniss von

145 Arten Flechten mit Notizen über die Art der Unterlage und der

resp. des Finders derselben.

Mit einer sehr umfangreichen und werthvollen Arbeit erfreut

Stizenberger die Freunde der Flechtenkunde schon wieder im

Jahre 1888 mit: „Lichenaea africana“. Diesem ersten Theile folgte

dann 1893 noch ein zweiter Theil. Auf 279 Seiten werden 1593 Arten

Flechten, theils schon bekannte, theils neue, deren Diagnosen bei-

gegeben sind, aufgeführt.

„Bemerkungen zu den Ramalina-Arten Europas“ ist der Titel

einer kleinen Schrift, in welcher 31 Arten mehr oder weniger aus-

führlich abgehandelt werden. Dann folgen: „Die Alectorien - Arten

und ihre geographische Verbreitung‘, in welchem Aufsatze 19 Arten

mit vielen Formen besprochen werden,

38 ]J. B. Jack.

In „Flora“ 1894 finden wir eine Beurtheilung des Werkes:

„Crombie, a Monograph of Lichens found in Britain: being a de-

scriptive catalogue of the Herbarium of the British Museum“.

Eine erst in diesem, seinem letzten Lebensjahre 1895 von

Stizenberger verfasste umfangreiche Arbeit: „Die Grübchenflechten

(Stictei) und ihre geographische Verbreitung“ hatte der unermüdliche

Verfasser noch das Glück, gedruckt zu sehen und an seine Freunde

vertheilen zu können; dagegen war ihm versagt, seine letzte Arbeit

aus dem Gebiete der Flechtenkunde vom 30. August 1895: „A List

of Lichens collected by Mr. Robert Reuleaux in the Western parts

of North America“, welche in Californien gedruckt, erst nach seinem

Tode in Konstanz angekommen ist, noch selbst in Empfang nehmen

zu können. Es werden in dieser Schrift 35 schon bekannte Flechten

aufgezählt noch mit der Beschreibung einer von Stizenberger

aufgestellten neuen Art.

Der Verstorbene war bis in seine letzten Lebensjahre dem

Studium der Flechten treu geblieben, wenn schon er in früheren

Jahren noch anderen Zweigen der Kryptogamenkunde seine Auf-

merksamkeit zugewendet hatte. Schon im Jahre 1857 betheiligte er

sich bei Herausgabe der „Characeen Europas“ im Vereine mit seinen

Freunden Al. Braun und Ludw. Rabenhorst, welche Sammlung

auf 5 Fascikel mit 121 Nummern ausgedehnt wurde, deren letzter

Fascikel 1878 erschienen ist. Auch war es Stizenberger, welcher

die Anregung zur Herausgabe der „Kryptogamen Badens“ mit Apo-

theker L. Leiner und dem Schreiber Dieses gab; diese Sammlung

wurde auch 1857 begonnen und nach einiger Unterbrechung, mit der

Zahl 1000, im Jahre 1875 vorläufig geschlossen. Bei Gründung der

„Deutschen Botanischen Gesellschaft“ im Jahre 1882, welche ihren

Sitz in Berlin hat und Mitglieder in allen Welttheilen zählt, schloss

sich Stizenberger deıselben gleich an und blieb bis zu seinem

Tode ihr Mitglied.

Stizenberger, welcher sich schon an der Universität mit grossem

Eifer dem Studium der Chemie zugewandt und sich reiche Kenntnisse

in derselben erworben hatte, wurde bald, nachdem er sich in Konstanz

niedergelassen hatte (1852), zum Visitator der Apotheken des früheren

Seekreises ernannt, welches Amt er über 40 Jahre, nämlich bis 1892,

ausübte. Diese Aufgabe musste ihn dahin führen, den Fortschritten,

welche die Pharmacie machte, fortwährend sein besonderes Interesse

zuzuwenden. Nicht nur war er bis zu seinem Tode Mitglied desfallsiger

Lesevereine, sondern er gab auch in manchem belehrenden münd-

lichen Vortrage sowie in vielen gedruckten Aufsätzen seiner Meinung

in dieser Richtung Ausdruck. |

Zum leitenden Arzt des Stadtspitals wurde Stizenberger gleich

in den ersten Jahren seiner Niederlassung von der Stadtbehörde

Ernst Stizenberger. 39

berufen; er hatte dieses Amt lange Jahre inne und bethätigte seinen

Eifer für die Verwaltung dieser Anstalt auch damit, dass er, als ein

Neubau und die Verlegung des letzteren ausserhalb der Stadt nöthig

wurde, nicht Mühe und eigne Kosten scheute, solche Anstalten in

grösseren Städten, wie Zürich, Basel und selbst Paris aufzusuchen.

Jahre lang bekleidete er auch das Amt eines zweiten Gerichtsarztes.

Stizenberger war lange Zeit (bis zu seinem Tode) Präsident

eines internationalen Vereins von Aerzten (Münsterlingia), welche

theils in Konstanz und dessen Umgebung, theils in der benachbarten

Schweiz ihren Wohnsitz haben.

Was Stizenberger als Arzt war, welchem Berufe er bis an

sein Lebensende treugeblieben ist, ersehen wir aus der Schilderung

seiner desfallsigen Thätigkeit aus der Feder eines seiner Kollegen,

welcher wir Folgendes entlehnen:!) „Stizenberger studirte zu

einer Zeit Medicin, als die pathologische Anatomie noch kein specielles

Fach war und in der inneren Medicin aufging, als die wissenschaftliche

Chirurgie und Augenheilkunde noch in den Windeln lagen, die tech-

nische Ausbildung des Mediciners noch eine mangelhafte war und

derselbe direct vom Examen oder nach einer kurzen wissenschaft-

lichen Reise in die Praxis trat. Er gehörte somit allerdings einer

älteren Generation und älteren Schule an, und doch ist uns Stizen-

berger niemals als ein Mediciner vorgekommen, der uns Jüngere

nicht verstand, oder den wir Jüngere nicht verstanden. Er hat mit

klarem Kopf und seltener Arbeitslust und Tüchtigkeit schon am

Gymnasium und später an der Universität den damals wohl besseren

Theil der Medicin, die Naturwissenschaften, gepflegt, und sich in

naturwissenschaftlichem Denken und Beobachten geübt, er war in

Freiburg ein Lieblingsschüler des dortigen berühmten Botaniker

Alexander Braun und hat, damals den Grund dazu legend, später

als selbstständiger Arbeiter bis in sein höheres Alter gerade in der

Botanik ganz Namhaftes geleistet, das, uns ferner liegend, hier nicht

näher erörtert werden soll. Darin liegt meines Erachtens der Schlüssel

dazu, dass er auch in seinem Berufsfach nicht stehen blieb, als die

Thore der Hochschule sich hinter ihm schlossen, dass er den ge-

waltigen Fortschritten der Medicin folgen konnte und folgte, dass

er für wirklich Gutes und Neues das richtige Verständniss besass

und die Lust und Liebe, sich darin zu vertiefen, dass er mit einem

Wort als Mediciner nicht alt wurde.“ ..... „Und so war er denn

als Vorsitzender unseres ärztlichen Vereins durchaus an seinem

Platz, er hatte ein feines sicheres Urtheil über das, was jeweils ge-

boten wurde, er ging mit Takt und Eifer auf wissenschaftliche Streit-

fragen ein, belebte die Discussion und war, was für den Vortragenden

!) Correspondenzblatt für Schweizer Aerzte, 1805, No. 21. (Dr. Kappeler,)

40 ]J. B. Jack.

ausserordentlich wohlthuend, dankbar, ja begeistert für alles wirklich

Gute.“ ....,„Was uns vor Allem an die Persönlichkeit des Ver-

storbenen fesselte, das war seine staunenswerthe Vielseitigkeit.“

“2... „Der practische Arzt, der namentlich in früheren Jahren eine

ausgebreitete Praxis besass und vielfach in die Ferne gerufen

wurde und der als solcher seine Kranken mit Umsicht, Vorsicht

und grosser Gewissenhaftigkeit behandelte, war nebenbei ein leiden-

schaftlicher Musikfreund, Musikkenner und selbstausübender Musiker.

Wer zu bestimmten Stunden des Tages an seiner schön gelegenen

Villa vorbeiging, der hörte schon von ferne die Klänge einer Orgel.

In weitem Umkreis fand selten ein gutes Concert statt, das er

nicht besuchte, in allen musikalischen Fragen war er in unserem

Kreise die grösste Autorität und wie ernst er auch diesen Theil

seiner Beschäftigung und Erholung nahm, das mag aus der einzigen

Thatsache ersichtlich sein, dass er in Helmholtz’ Tonempfindungen

so gut zu Hause war, wie der Theologe in der Bibel.“... „Die

Vielseitigkeit machte ihn nicht oberflächlich. Was er auch that und

unternahm, er that es mit Feuereifer und auf Grund sorgfältiger

Studien.“.... „Wenn Sie seine populären Schriften durchlesen, so

werden Sie finden, dass es sich um fein durchdachte, auf gründliche

Studien basirte, Arbeiten handelt, ohne Ausnahme auch sind es

kleine stylistische Meisterwerke.“

Stizenberger unterhielt bis zu seinem Tode einen regen

botanischen Verkehr mit zahlreichen Freunden der Flechtenkunde,

unter anderen namentlich mit Dr. Arnold in München und Dr. Ny-

lander in Paris, welch letzterer schreibt: .... „notre ami succomb&

si brusquement et laissant apre&s lui un si grand vide dans la science.“ —

Er opferte manche Stunde der Bestimmung von Flechten, welche

ihm, der als Autorität in diesem Gebiete galt, von Andern vorgelegt

wurden. Zu einer Bearbeitung der Flechten für die 2. Auflage der

„Rabenhorst’schen Kryptogamenkunde“, zu welcher er aufgefordert

wurde, wollte er sich nicht mehr entschliessen.

Ueber die Sammlungen, welche der Verstorbene hinterlassen hat

und die namentlich an Flechten sehr reich sind, da er käufliche

Exsiccaten, manche mit grossen Kosten, sich überall her verschaffte,

bestimmte er einige Jahre vor seinem Ableben schon, dass sie als

Geschenk von ihm der technischen Hochschule in Zürich, mit deren

Leiter er sehr befreundet war, zugewandt werden sollen. Es lag ihm

daran, dass diese Schätze, denen er im Leben viele Arbeit und Zeit

opferte, welche ihm aber auch viele Freude bereitet hatten, da auf-

bewahrt und erhalten werden sollen, wo sie geschätzt und gepflegt

würden,

vun vn

BEE De 0

Ernst Stizenberger. 41

Verzeichniss der von Dr. Stizenberger veröffentlichten Schriften in

1858.

1860.

1861.

1862.

1863.

18064,

1864,

1867.

1868.

1872,

1873.

1874.

1875.

chronologischer Reihenfolge.

Uebersicht der Versteinerungen des Grossherzogthums Baden.

Verlag der Universitäts- Buchhandlung in Freiburg im Br.

Spirulina und Arthospira. Hedwigia. Bd. I. 1854 No. 7,

Notizen über Protococcus crustaceus. Ebenda 1855 No. 11.

Handbuch der Geologie, zum Gebrauche bei Vorlesungen und zum

Selbstunterricht bearbeitet von Dr. Carl Fromherz. Nach dem Tode

des Verfassers herausgegeben von Dr. E. Stizenberger. Stuttgart.

Schweizerbart'sche Verlagshandlung und Druckerei.

Untersuchungen über Ephebe. Hedwigia. Bd. II. 1858 No. 1.

Dr. Ludwig Rabenhorst's Algen Sachsens resp. Mitteleuropas.

Decade 1—C. Systematisch geordnet (mit Zugrundelegung eines neuen

Systems) von Dr. E. Stizenberger. Dresden. Druck von €.

Heinrich.

Actinopelte eine neue Flechtensippe. Mit 1 Tafel. Flora No. 1 pag. 1.

Versuch zur Bereinigung der Terminologie für die Fortpflanzungs-

organe der blüthenlosen Pflanzen. Ebenda. No. 13, 14 und 15.

Anzia, eine neue Flechtengattung. Ebenda No. 25 pag. 390.

Beitrag zur Flechtensystematik. Bericht über die Thätigkeit der

St. Gallischen naturwissenschaftlichen Gesellschaft während des Vereins-

jahres 1861, pag. 124—182.

De Parmelia colpode. Flora, No. 16 p. 241.

Ueber den gegenwärtigen Stand der Flechtenkunde. Eine Skizze.

Flora No. 26, p. 401—408.

Kritische Bemerkungen über die Lecideaceen mit nadelförmigen

Sporen. Mit 2 Tafeln. In Verhandlungen der Kais. Leop.-Carol.

Deutschen Akademie der Naturforscher. Band XXX.

Conspectus specierum saxicolarum generis Opegraphae. Flora.

Ueber die steinbewohnenden Opegrapha-Arten. Mit 2 Tafeln. Ver-

handlungen der Kais. Leop.-Carol. Deutschen Akademie der Natur-

forscher. Band XXNI.

Ueber Volksbibliotheken. Konstanz, Wagner'sche Buchdruckerei.

Lecidea sabuletorum Flörke und die ihr verwandten Flechtenarten.

Eine Monographie. Mit 3 Tafeln. Verhandlungen der Kais. Leop.-

Carol. Deutschen Akademie der Naturforscher. Band XXXIY.

De Lecanora subfusca ejusque formis commentatio. Botanische

Zeitung. No. 52, p. 2—14.

Verzeichniss der von Th. von Heuglin auf Nowaja Semlja ge-

sammelten Lichenen. Petermann's „Geographische Mittheilungen‘“.

Heft 11.

Botanische Plaudereien über die Flechten (Lichenes). Glarus,

Buchdruckerei von Frid. Schmid.

Kriegsbereitschaft im Reiche Floras. Bericht über die Thätig-

keit der St. Gallischen nat. Gesellschaft während des Vereinsjahres

1873—74, p. 279-308.

Index lichenum hyperboreorum. FEbenda in Bericht 1874-75,

p. 189—245,

ee ee

ai le du a

1878,

1878.

1879.

1881.

1884,

1886,

1887.

1888,

1889,

1891.

1892.

1894,

1895.

J. B. Jack.

Die ökonomischen Beziehungen der Flechten. Ebenda in

Bericht 1877—78, p. 202—207.

Ein Stück Meinauer Kulturgeschichte. Konstanz. Druck von A.

Moriell.

Der Choral. Wochenblatt der Frankfurter Zeitung. No. 11, 12 und 13.

Lichenes helvetici eorumque stationes et distributio. Bericht über

die Thätigkeit der St. Gallischen naturw. Gesellschaft 1880—81, p. 255

bis 522, 1881—82, p. 201—327.

Blätter, Blüthen und Früchte. Ebenda, Bericht 1883—84, p. 283— 279,

Nachtrag zur botanischen Ausbeute der Novara-Expedition.

Flora No. 26,

Lichenes Insulae Maderae. Extr. do Boletim da Soc. Brot. V.

Conimbricae.

Lichenaea africana, Bericht ü,. d. Th. der St. Gallischen nat. Gesell-

schaft 1888—89, p. 105—149.

Lichenaea africana. Commentationis de Lichenibus africis superiore

anno institutae particula altera. Ebenda, Bericht 1889—90, p. 133—268.

Bemerkungen zu den Ramalina-Arten Europas. 34. Jahresbericht

der Naturforscher - Gesellschaft Graubündens. Chur,

Die Alectorienarten und ihre geographische Verbreitung. Annalen

des K. K. Naturhistorischen Hofmuseums in Wien. Band VII, Heft 3,

p. 117—134.

Supplementa ad Lichenaeam africanam. Bericht ü. die Th. der

St. Gallischen nat. Gesellschaft 1893—94, p. 215— 264.

Crombie, a Monograph of Lichens found in Britain: being a

descriptive catalogue of the species in the Herbarium of the British

Museum; Part. I, London 1894. Flora, Heft 3, p. 501—503.

Die Grübchenflechten (Stictei) und ihre geographische Verbreitung.

Flora 1895, Ergänzungsband, Heft 1, p. 88—150.

A List of lichens collected by Mr. Robert Reuleaux in the Western

parts of North America. By Dr. Stizenberger, Konstanz. Extract

from Proc. Cal. Acad. Sci., Ser. 2, Vol. V, p. 535— 538,

Fragmenta mycologica XLIV.

Auctore P. A. Karsten.

Schulzeria septentrionalisn, sp. — Pileus carnosus, mollis,

e convexo explanatus, subumbonatus, laevis, glaber, siccus, albidus,

circiter 10 cm latus. Stipes centralis, aequalis, basi bulbillosus, a

pileo discretus, glaber, albidus, circiter 15 cm altus, Lamellae sub-

confertae, liberae, remotae, latae, albidae.

Ad lignum vetustum in regione Jyväskylensi, Haapakoski, legit

amicus I. Lindroth.

Russula pallida n. sp. — Acris. Pileus carnosus, firmus,

rigidus, e convexo explanatus, ut plurimum undulato-difformis, pelli-

cula viscidula adnata tectus, constanter pallescens, subinde hinc inde

obsolete roseo-sanguineus, margine laevi, usque ad 9 cm latus. Stipes

aequalis, laevis, saepe curvatus, albus, usque ad 6 cm altus, cir-

citer 2,5 cm crassus. lamellae subliberae, confertae, acequales, sat

angustae (usque ad 1 cm latae), albae, acie subinde sulphureae,

siccitate Futescentes. Sporae sphaeroideae, aculeatae, 5-8 mmm

diam. Cystidia fusoidea 30-40 — 9 mmm.

In pineto prope Mustiala, m. Aug.

Russulae rosaceae affıns. A R. pallescente, cum qua

colore vegeta congruit, statura robustiore, margine pilei laevi, sporis

aliisque notis statim dignoscenda.

Hygrocybe sulcata n. sp. — Pileus e campanulato-convexo

expansus, obtusus, membranaceus, disco carnosulus, viscidus, disco

excepto laevi striato-sulcatus, saturate fulvus, nitidus, vix expallens,

circiter 2 cm latus. Stipes cavus, aequalis, substrictus, tenax, laevis,

glaberrimus, viscidus, lutescens, apice in fuligineum vel coerules-

centem levissime vergens, 4—5 cm altus, 4 mm crassus. Lamellae

decurrentes, distantes, distinctae, crassiusculae, lutescentes, postice

in fuligineum leviter vergentes.

In silva frondosa ad Mustiala (J. I. Lindroth).

Inter H. laetam Fr. et H. sciophanam Fr. media, differens

ab illa pileo membranaceo, sulcato et colore, a hac pileo nitido,

non hygrophano nec non lamellis decurrentibus, lutescentibus,

44 P. All Karsten.

Cortinarius foetidus n. sp. — Pileus carnosus, tenuis, orbi-

cularis, convexo-planus, obtusus, laevis, viscosus, nitens, fulvo-lutes-

cens, vix hygrophanus, carne albida, circiter 3 cm latus. Stipes

medullatus, mollis, aequalis, glaber, nudus, candidus, circiter 7 cm

longus et 1 cm crassus. Lamellae adnatae, confertae, albidae,

mollissimae, antice subdeliquescentes. Sporae ovales vel late ellip-

soideae, flavescentes (sub lente), laeves, 5—7 — 3—4 mmm.

In paroecia Tammela prope praedium Saaris (K. Ruhanen).

Sapor valde amarus, odor foetens Cortinarii tragani. Corti-

nario emollito affınis, odore autem foetido, margine pilei regularis

membranaceo, stipite longivre lamellisque confertis distinctus.

Naematoloma irroratum n. sp. — Pileus carnosus, tenuis,

convexo-planus, gibbus, levis, fulvo-melleus, marginem versus micore

sericello-argenteo, circiter 4 cm latus. Stipes tenax, fibrilloso - seri-

ceus, pallescens, aequalis, inferne flexuosus, ferrugineus tomentoque

denso concolori obvolutus, radicatus, circiter 13 cm altus et 5 mm

crassus. l.amellae adnatae, confertae, sat angustae, acie dentatae,

stramineo-pallidae, dein obscuriores obsoletissimeque virentes. Sporae

ellipsoideae, hyalinae (sub lente), uniguttulatae, 6—8 — 4 mmm.

In sphagnosis inter muscos prope Mustiala, m. Julio.

Sapor et odor valde amarus. Solitarium. A N. disperso (Fr.)

proximo micore pilei sericello-argenteo, stipite sapore statim digno-

scendum,

Physisporus flavicans n. sp. — FEffusus, determinatus, ad-

natus, tenuis, ambitu byssinus, albus. Pori curti, rotundi aequales,

firmi, integri, saepe obliqui et laceri, flavicantes, minuti. Cystidia nulla.

Ad lignum trunei secti pini corticati prope Mustiala, m. Aug.

Caloporia expallescens Karst. Poria expallescens Karst.

Sacc. Syll. VI, p. 333. — Longitudinaliter effusa, indeterminata,

submembranacea, mollis, separabilis, ambitu tomentosa s. dense

bombycina, candida. Pori ceracei, rotundi, minuti, curti, pertenues,

integerrimi, albidi, mox fulventes vel helvoli. Cystidia nulla.

In ligno vetusto betulae prope Mustiala, m. Oct. 1895 denuo

reperta.

Caloporia incarnata (Fr.) Karst. — Effusa, indeterminata

membranacea, separabilis, ambitu byssino, albo. Pori exigui, curti,

ut plurimum obliqui, elongati vel subflexuosi, raro rotundi, dissepi-

mentis, ceraceis, crassiusculis, carneo-pallidi, demum subrufi. Cysti-

dia nulla.

In trunco secto decorticato pini corporibusque adjacentibus ad

Mustiala, m. Oct.

na, >: ee u a a cl RR ET IE

Fragmenta mycologica XLIV. 45

Serpula rufa (Pers.) Karst. var. pinicolan. var. Mycelium

pelliculam tenuissimam, crustaceo-adnatam, albam sistens. Hyme-

nium carnoso-molle, aequaliter porosum, carneo-flavum.

In ligno pini in regione Mustialensi, m. Sept.

Grandiniella livescens Karst. sporas 6-7 = 3 mmm,

cystidia 60 —70 — 8—10 mmm hyphasque 4—6 mmm crassas habet.

Corticium serum (Pers.) var. sphaerincolum n. var. —

Effusum vel ovale, ceraceum, laxe adnatum, tenue, rugosum, albidum,

ambitu similari. Sporae sphaeroideo - ellipsoideae, uniguttulatae,

5—6 — 3-4 mmm. Hyphae ramosae, articulatae, 2 mmm crassae.

Supra Cucurbitariam Caraganae in Mustiala, m. Nov.

Prototremella Tulasnei Pat. — Effusa um vel linearis, gelati-

noso-ceracea, tenuissima, adglutinata, nuda, caesia, sicca nigrescens,

ambitu simiları. Basidia tetraspora, obovoidea, circiter 12= 8 mmm.

Sporae obovoideo-sphaeroideae, intus granulosae, hyalinae, 10—= Smmm

vel 5--8mmm diam. Hyphae solito remotae, raro crebre septatae,

hinc inde immixtis inflatis plasmate fulvescente refertis.

In cortice interiore Salicis phylilaefoliae vetusto loco udo

in ditione Mustialensi, m. Oct.

Exidiam viscosam (Berk.) in memoriam revocat.

Corticium rimicolum n. sp. — Longitudinaliter effusum, inde-

terminatum, ceraceum, pertenue, adglutinatum, ambitu similare,

caesium vel coeruleo-glaucum, siccum sporis albopruinosum, contextu

minute parenchymatico. Sporae sphacroideo-ellipsoideae vel sphae-

roideae, hyalinae, 8-10 = 6-8 mmm.

In rimis corticis crassioris populi in agro Mustialensi, m. Oct.

Corticium tuberculatum n. sp. — ÖOrbiculare vel elongato-

effusum, determinatum, adnatum, crassiusculum, hymenio ceracco,

praecipue in statu udo colliculoso vel tuberculoso, albido, mox

alutaceo, ambitu radiato-fhibrillosum vel nudum. Sporae ellipsoideae

vel sphaeroideo-ellipsoideae, eguttulatae, 5-7 = 3 4 mmm.

In cortice crassiore vetusto Populi tremulae, in regione

Mustialensi, m. Oct.

A Corticio confluente affıni hymenio colliculoso sporisque

diversum.

Xerocarpus crustaceus n. sp. — Syn.: Corticium ace-

rinum Karst. Öfvers. Finl. Basidsw. p. 415 pr. p. — Eiffusum,

tenuissimum, subgrumosum, indeterminatum, arcte crustaceo-adnatum,

laeve, siccum parum rimosum, albido-pallens, opacum, ambitu similari.

Sporae ellipsoideo-sphaeroideae velsubsphaeroideae, 4-7 —3--5mmm.

Ad corticem Populi tremulae et Pop. nigrae in agro Mustia-

lensi bis legi.

46 P, A. Karsten.

Corticium pelliculare Karst. Corticium laeve Pers.***

pelliculare Karst. Krit. Öfvers. Finl. Basidsw. p. 411. — Effusum,

indeterminatum, adnatum, pertenue, hymenio ceraceo, membranaceo,

tenuissimo, albo vel albido, in alutaceum vel lutescentem levissime

vergente, sicco vulgo rimoso, ambitu similari. Sporae ellipsoideae,

5—7 = 2-3 mmm. Basidia 18—22 = 5—7 mmm.

Supra corticem et lignum Alni et Betulae circa Mustiala.

Hypochnus obscuratus n. sp. — Effusus, floccoso-membra-

naceus, indeterminatus, tenuis, facile secedens, griseo -fumosus, sub-

inde papillis minimis obsitus, ambitu similari. Sporae sphaeroideae,

aculeolatae, flavescentes (sub lente), 7—10 mmm diam. Hyphae

ramosae, nodoso-articulatae, plus minus flavescentes, 4—7 mmm

crassae.

Supra corticem vetustum Tiliae septentrionalis in agro

Mustialensi, m. Sept. 1894.

Pro Fennia novae Uredineae hoc anno lectae hae: Caeoma

confluens(Pers.)Schroet. in foliis Ribis alpina ad Mustiala (P.A.K.);

Uromyces Valerianae (Schum.) Fuck. prope oppid. Fenniae

Gamla Carleby (H. Krook); Aecidium Campanulae Gaill, in foliis

Campanulae rotundifoliae prope Gamla Carleby (H. Krook);

Puccinia Valantiae Pers. (l. Lindroth); Uromyces Acetosae

Schroet. in proxima Jyväskylä (I. Lindroth) et Gym nosporangium

tremelloides R. Hart. Helsingforsiae (O. Karsten)

Coryne galeata (Pers.) Karst. Syn.: Helotium galeatum

Pers. Comment. p. 91. Syn. p. 678. Tremella (Coryne) sar-

coides 3 galeata Fr. Syst. myc. II, p. 218. — Stromata capitata,

solitaria vel caespitosa, mollia viscosa, circiter 1 cm alta. Capitulum

suborbiculare, compressum, lobatum, pallidum. Stipes simplex velramo-

sus, firmus, ferrugineus. Conidia elongata, curvula, 2—3 = 0,5 mmm.

In ramis Salicis emortuis loco udo dejectis ad Mustiala, m. Oct.

Helotium viridiflavescens n. sp. — Apothecia sessilia,

ceracea, mollia. Cupula orbicularis, subinde margine repanda, con-

vexa, pertenuis, virescens, sicca extus fuliginea epithecioque flavicans,

0,3—0,4 mm lata. Asci cylindraceo-subclavati, circiter 45 — 3-4 mmm.

Sporae 8:nae, elongatae, rectae, continuae, hyalinae, 4—5 = 1 mmm.

Paraphyses parum notabiles.

In cortice Alni incanae in proxima Mustiala, m. Oct.

Excipulum parenchymatico-contextum, fuligineum.

Helotinm myriadeum.n. sp. — Apothecia confertim gregaria,

subsessilia, ceracea, convexa, immarginata, nuda, albida vel alba,

circiter 0,2 mm lata, Stipes papillaeformis. Asci cylindraceo -sub-

Fragmenta mycologica NLIV, 47

clavati, 40—45 — 3 mmm. Sporae 8:nae, elongatae, rectae vel cur-

vulae, continuae, vulgo guttulatae, hyalinae, 4—5 — 0,5—1 mmm.

Paraphyses parum notabiles.

Supra corticem Populi Tremulae ad Mustiala, m. Sept.

Pseudopezizam Cerastiorum (Wallr.) Fuck. in regione

Jyväskylensi, Haapakoski, observavit amicus I. Lindroth.

Nectriam consanguineam Rehm rarissimam in Fennia prope

praedium Saaris paroeciae Tammela primus legit amic. I. Lindroth.

Phyllosticta Draconis Berk. Sacc. Syll. III, p. 60 (nomen).

— Pyrenia innato-prominula, sphaeroidea, atra, pertusa, punctiformia,

in macula expallente. Sporulae cylindraceae, utrinque obtusae,

medio leviter constrictae, guttulatae, hyalinae, usque ad 20 — 3 mmm.

Sporophora filiformia, usque ad 25 — 1,5 mmm.

In foliis languidis Dracaenae Draconis in regione Helsing-

forsiensi, Gumtäckt, legit filius meus Onni.

Dacryodochium n. gen. — Sporodochia pulvinata vel verruci-

formia, gelatinosa, laeticoloria. Conidia in sporophororum apice

capitato-aggregata, sphaeroidea, hyalina.

D. fluxile n. sp. Sporodochia gregaria, saepe confluentia,

superficialia, pulvinata, gelatinoso-fluxilia, incarnato-pallida, sicca

duriuscula, carnea vel subaurantiaca, minuta. Sporophora ex hyphis

repentibus, ramosis, 1- 2 mmm crassis oriunda, tenerrima. Conidia

sphaeroidea, eguttulata, hyalina, 3--4 mmm diam,

In ramis corticatis Salicis locis udis prope Mustiala.

Levieuxiella laevata (Fr.) Karst. Syn. Sphaeria |. Fr. Syst.

Myc. Il, p. 495. Prope yasa (Fenniae) in ramulis Sorbi olim a me

lecta. — Sporulae oblongatae vel subcylindraceae, eguttulatae, hyalinae,

2—3 = l mmm.

Sphaeronaema Agavesn. sp. — Pyrenia gregaria, subcutanea,

cylindraceo-attenuata, mollia, sicca cornea, atra, apice per cuticulam

erumpente pallida vel fulvescente pallida, minuta. Sporulae ellipsoidea,

eguttulatae, hyalinac, 2—-3 — 1—2 mmm.,

Ad folia Agaves languescentia in Mustiala, m. Martio (O. Karsten).

Mycogala firma n. sp. — Pyrenia solitaria vel 2—3 aggregata,

maculis vagis, fulvescentibus, arescendo fuscescentibus, pallido-

marginatis insidentiä, superficialia, carbonacea, firma, rotundata,

astoma, dein inordinate dehiscentia, nucleo pallido-flavo, demum

pulveraceo, nigra, circiter 0,3 mm lata. Sporulae sphaeroideae, pallide

flavae, coacervatae sulphureae, laeves, 3—4 mmm diam.

In foliis vivis Palmarum, Petropoli (O. Karsten).

Septoria Hyperici Desm. prope opp. Jyväskyla inventa est ab

amico I Lindroth.

en in a

48 P. A. Karsten.

Trichostroma aterrimum n. sp. — Sporodochia confertissima,

saepe confluentia, maculas efformantia, verruciformia, atra, 40—70 mmm

lata, setulis strictis, rarius curvatis, rigidis, pauciseptatis, apicem

versus attenuatis, olivaceis vel olivaceo-atris, usque ad 70 mmm

longis undique obtecta. Conidia fusoideo-elongata, curvata, pluri-

guttulata, hyalina, 13—17 = 3—4 mmm.

Ad folia Agaves languidae in Mustiala (O. Karsten).

Pestalozzia truncata Lev. Var. Rubin. var; — Acervuli

gregarii, globoso-depressi, erumpentes, nigri. Conidia oblongata,

raro inaequilateralia, 3-septata, ad septa non vel vix constricta,

cellulis 2 mediis majoribus fuligineis, 2 extimis minutissimis hyalinis,

supera in cilia 2—-3, saepe furcata, conidiis longiora abeunte, infera

in pedicellum filiforme conidium superans, utraque denique secedente

et conidium truncatum, l-septatum, 13—14 = 4-6 mmm muticum,

relinquente.

In caulibus Rubi siccis prope Aboom Fenniae m. Majo.

A typo conidiis minoribus angustioribusque praeprimis differt.

Species Pestalozziae in Fennia prima.

Ramulariam Lampsanae (Desm.) Sacc., e Fennia adhuc

non cognitam, hoc anno ad Mustiala legi. — Conidia ovoidea,

ellipsoidea vel demum teretia, obtusa, continua vel 1-septata, usque

ad 16 = 4 mmm.

Sporotrichum crassipilum n. sp. — Caespituli effusi, velutini,

denique pulveracei, olivaceo-grisei, crassiusculi. Hyphae repentes

articulatae, 5—10 mmm crassae. Conidia copiosa, sphaeroidea,

hyalina, 2—5 mmm diam.

Supra fructua Cucurbitae in Mustiala, m. Sept.

Sporotrichum ambiguum n. sp. — Caespituli longitudinaliter

effusi, velutini, griseo-fusci. Hyphae repentes, articulatae, ramosae,

flavidae (sub lente), circiter 3 mmm crassae. Conidia ovalia, eguttulata,

hyalina (sub lente), 6-8 = 4-5 mmm.

In ligno vetusto in insula Mjölö prope Helsingforsiam Fenniae.

Ad Trichosporium vergit.

Brachysporium Typharum (Desm.) Karst. var. fuscum

n. var. — Caespituli gregarii, oblongati vel elongati, erumpentes,

fusci. Hyphae fasciculatae, ascendentes, flexuosae, simplices, septatae,

nodulosae. Conidia oblongata, 1—3-septata, fuliginea, usque

ad 17 = 7 mmm.

In foliis Typhae latifoliae emortuis prope Mustiala, m. Aprili.

Hyphae basi coalitae, stratum compactum efformantes,

| Besründet 18952 Hurch Dr. Rabenhorst

als

»Notizblatt für kryptogamische Studien.«

HEDWIGIA.

Kryptogamenkunde

nebst

Repertorium für kryptog. Literatur.

Redıgiırt

von

Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von

Paul Hennings und Dr. G. Lindau

in Berlin.

= 189 6, 0

Band XXXV.

Heft 2.

Inhalt: P. A. Karsten, Fragmenta mycologica XLIV (Schluss). — O. Pazschke, |

II. Verzeichniss brasilianischer von E. Ule gesammelter Pilze. — G. Lindau,

Zwei neue deutsche Pilze. — Dr. Röll, Nachtrag zu der in der Hedwigia

(Bd. XXXII. 1893) erschienenen Arbeit über die von mir im Jahre 1888 |

in Nord-Amerika gesammelten Laubmoose. — F. Stephani, Hepaticarum

species novae IX (Anfang). — Repertorium No. 2.

Dresden,

Druck und Verlag von C. Heinrich.

Erscheint in zweimonatlichen Heften. |

Abonnement für den Jahrgang 12 Mark |

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Ausgegeben am 20. April 1896.

An die Leser und Mitarbeiter der

„Hedwigia”.

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mit der Aufschrift

„Für die Redaction der Hedwigia“ ?

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Um eine möglichst vollständige Aufzählung der krypto-

gamischen Literatur und kurze Inhaltsangabe der wichtigeren Arbeiten

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der Titel baldmöglichst nach dem Erscheinen zu benachrichtigen;

desgleichen sind kurz gehaltene Selbstreferate über den wichtigsten

Inhalt sehr erwünscht.

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Die Autoren erhalten auf Wunsch 25 Sonderabzüge kostenlos,

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C. Heinrich’s Verlag.

Fragmenta mycologica XLIV. 49

Trichosporium tenellum n. sp. — Caespituli late effusi,

tenuissimi, orbiculares, pulveracei, olivaceo-atri, minuti. Hyphae

parcae, ramosae, articulatae, tenerrimae, hyalinae, circiter 2 mmm

crassac. Conidia copiosissima, sphaeroidea, eguttulata, olivacea, in

flavum levissime vergentia, pellucida (sub lente), circiter 3 mmm diam.

Ad ramos Rubi idaei siccos Aboae (Fenniae) m. Majo.

Coniosporium ferruginascens n. sp. — Acervuli super-

ficiales, late effusi, aridi, contigui, subinde rimosi, cinnamomeo-

ferruginei. Conidia ellipsoidea, 1— 2-guttulata, subflava et pellucida,

(sub lente), 8-10 = 4—6 mmm.

Supra corticem laevem betulae in Mustiala.

Hypochnum ferrugineum externa facie nonnihil simulat.

Zygodesmus truncatusn. sp. Effusus, mucedineus, latus,

avellaneus vel spadiceo-testaceus. Hyphae dichotomae, articulatae,

laevissimae, enodosae, apice truncatae, hyalinae (sub lente), 12-20

mmm crassac. Conidia sphacroidea, aculeolata, membrana obscura,

subfuliginea, diaphana, circiter 4 mmm diam.

Supra corticem vetustum salicis ad Mustiala, m. Oct.

Mustiala, m. Nov. 1895.

Hedwigia Bd, XXAXV. 1890. 4

ae 30} ud Funle

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II. Verzeichniss brasilianischer von E. Ule

gesammelter Pilze.

Nach Untersuchungen von G. Bresadola, P. Hennings, H. Rehm und nach

eigenen Beobachtuugen zusammengestellt von OÖ. Pazschke.

Die hier verzeichneten Pilze sind von Herrn E. Ule in den

ersten Monaten des vorigen Jahres auf einer Reise, welche er zur

Erforschung der Serra do Itatiaia unternommen hatte, gesammelt

worden. Die Serra do Itatiaia liegt nördlich von Rio de Janeiro und

zumeist im Staate Minas Geraös, Campo Bello dagegen im Staate

von Rio de Janeiro. In dem nachfolgenden Verzeichnisse ist der

Kürze wegen statt Serra do Itatiaia nur Itatiaia genannt worden.

Von den obengenannten Herren haben Herr Abbe G. Bresadola die

Hymenomyceten mit Ausnahme der Exobasidieen, und die Fungos

imperfectos, Herr P. Hennings die Ustilagineen und Exobasidien,

Herr Medizinalrath Dr. H. Rehm die Ascomyceten und ich selbst

den Rest bearbeitet.

Ustilaginaceen.

Ustilago bicornis P. Henn. n. sp.

Soris paniculis incolentibus tumefacientibusque, cuticula alutacea

tectis, dein ruptis, atrobrunneis, pulverulentis; sporis subglobosis,

ovoideis vel oblongis, acutangulis, intus punctulatis, olivaceis,

8—13 X 7-9 41, episporio minute punctato.

Campo Bello. April 1894. In inflorescentiis Andropogonis

bicornis. — E. Ule n. 2079.

Die ganzen Rispen sind gallenartig verbildet und ragen die vom

schwarzen Sporenpulver erfüllten aufgetriebenen und verlängerten

Hüllspelzen allseitig abstehend hervor. Aeusserlich hat diese Art

grosse Aehnlichkeit mit U. tumefaciens P. Henn.

Ustilago leucostachys P. Henn. n. sp.

Soris in paniculis inclusis, eas omnino destruentibus, primo

euticula alutacea tectis, dein pulverulentis atris; sporis subglobosis

vel ellipsoideis, fusco-olivaceis, punctulatis, 13—15 X 8—-13 u, episporio

atroolivaceo, minute, verrucoso vel sublevi.

Itatiaia. Febr. 1894. In inflorescentiis Andropogonis leucostachyi.

— E. Ule n. 2096.

II. Verzeichniss brasilianischer von FE. Ule vesammelter Pilze. Fey

Eine von der vorigen durch die Sori völlig verschiedene Art.

Die von den Blattscheiden umschlossenen Inflorescenzen werden

gänzlich zerstört und vom schwarzen Sporenpulver erfüllt, aus dem

nur vereinzelt Reste der Rispenäste hervorragen.

Ustilago insularis P. Henn. n. sp.

Soris paniculas totas implentibus destruentibusque, pro parte

cuticula membranacea tectis, atris,; sporis subglobosis, pallide olivaceis,

6—8 1, episporio levi, olivaceo, crasso.

Campo Bello. Febr. 1894. In inflorescentiis Tricholaenae insu-

larıs L, E. Ule. n. 2102.

Die von den Blattscheiden umhüllten Rispen werden wie bei

voriger Art gänzlich durch den Pilz zerstört und ragen nur die Reste der

Rispenstiele aus den Scheiden hervor. — Diese Art scheint der

U. Ischaemi Fuck. und U. Panici leucophaei Bref. am nächsten zu

stehen und ist von den übrigen auf Tricholaena beobachteten Arten

verschieden.

Ustilago vesiculosa P. Henn. n. sp.

Soris paniculas implentibus et tumefacientibus, saccatis, bullato-

inflatis, subglobosis 3—5 mm diametro, cuticula alutacea tectis,

vertice subulato-elongatis; sporis subglobosis, ovoideis vel ellipsoideis,

intus punctatis, ochraceis, 8-11 X 7—9 u, episporio atro brunneo,

granulato, vel minute verrucoso-punctato.

Itatiaia et A. Campo Bello. Febr. 1894. In paniculis Panici sp.

— E. Ule 2080 und 1083.

Der Pilz befällt die Rispen, welche völlig zerstört werden. Die

Sori treten an der Spitze der Halme als erbsengrosse kugelige oder

längliche Blasen auf, die im Innern von der braunschwarzen Sporen-

masse erfüllt, von einer lederfarbigen Haut umschlossen sind. Die

Brandblasen sind am Scheitel meist mit einer c. !/; cm langen pfriem-

lichen Spitze, die durch das zerstörte Blatt gebildet wird, versehen.

Von U. Panici miliacei (Pers.) unter welcher Bezeichnung die Art in

Rabenh.-Pazschke, Fungi eur. n. 4008 von Ule aus Brasilien heraus-

gegeben, scheint mir die Art doch wegen der sehr kleinen, blasen-

förmigen Sori, sowie wegen des mehr braunschwarzen Sporenpulvers

verschieden zu sein, wenn sie auch dieser Art jedenfalls schr nahe

steht.

Cintractialeucoderma (Berk.) P. Henn. in Hedw. 1895 pag. 335

form. utriculicola P. Henn.

Campo Bello in Aehrchen von Rynchospora aurea. — E. Ule

n. 2108.

52 O. Pazschke.

Uredinaceae.

Puccinia Dichondrae Montagne Syll. pag. 313.

In foliis vivis Dichondrae spec. Itatiaia. März 1894. — E. Ule

n. 2045.

Puccinia Griseliniae Pazschke nov. spec.

Soris hypophyllis, diu tectis, dein epidermide fissa cinctis, in

pagina foliorum superiore maculas pallidas editas generantibus.

Teleutosporis oblonge-clavatis vel rectangularibus, uniseptatis, loculis

inaequalibus, superiore plerumque majore, et episporio aequilater

incrassata ca. 2,5 . crasso praeditis, ad septum constrictis, pallide

fuscis, 53— 68 u long., 13—16 « lat., paullatim in stipitem attenuatis,

stipite firmo, ca 50—60 4 long., suffultis.

In foliis vivis Griseliniae ruscifoliae Taub. Itatiaia. März 1894.

— E. Ule n. 2101.

Unterscheidet sich von Puccinia porphyrogenita Curt. durch die

blassen Flecke, nie zugespitzte Sporen, das gleichmässige verdickte

Epispor etc.

Aecidium Ranunculi Schwz. Syn. Carol. pag. 67.

In foliis vivis Ranunculi bonariensis. Itatiaia. Febr. 1894. —

E. Ule n. 2093.

Hymenomycetes.

Exobasidium Gaylussaciae P. Henn. nov. spec.

Receptaculo in foliis rarius in caulibus petiolisque, maculis irregula-

ribus, effusis, plus minus bullatis, crassioribus, subcarnosis, fuscidulis

vel atrosanguineis, pruinosis; sporis cylindraceis, oblongis, utrinque

obtusis, rectis vel subcurvulis, hyalinis, 7—8X1-—1! u.

Itatiaia. März 1894. In foliis et caulibus Gaylussaciae sp. divers. —

E. Ule n. 2086, 2088, 2089.

Die befallenen Blatt- und Stengeltheile sind nur schwach verdickt,

häufig blasig verbildet, braun oder dunkelblutroth gefärbt.

Polystictus Sector (Ehrbg.) Fr. Epicr. pag. 480. var. zonarius.

In sylvis. Itatiaia. Febr. 1894. — E. Ule. n. 2082.

Pyrenomycetes.

Asterella microsphaeroides Rehm nov. spec.

Perithecia, mycelio prorsus deficiente, laxe in pagina inferiore

foliorum sessilia, dispersa, punctiformia, atra, sub microscopio globu-

losa vel lentiformia, glabra, mollia, extus granulose fusce conspersa,

excipulo hyalino tenuissimo cincta, 250 u diam.

Asci creberrimi, ovales, apice valde incrassati, 21 « long., 12 u

lat., 8 spori, intra paraphyses hyalinas positi.

u ; 5 a nn HATTE

II. Verzeichniss brasilianischer von E. Ule gesammelter Pilze. 53

Sporidia clavata, 2-cellularıa, cellula inferiore interdum longiore,

hyalina, 8 u long., 2,5 « lat., irregulariter sita.

In pagina inferiore foliorum vivorum Leucotho&es. Itatiaia. Febr.

1894. — E. Ule n. 2084.

Dürfte wohl besser als eigenes Genus zu den Perisporiacen ge-

stellt werden, wegen gänzlichem Mangel eines Mycels.

Asteridium Esterhazyae Rehm nov. spec.

Perithecia in pagina foliorum superiore late fusco -nigrata dense

gregaria vel conglobata, laxe sessilia, globulosa, parenchymatice

contexta, astoma, nigrofusca, 60 «- diam., mycelio hypharum simplicium,

rectarum, raro denique ramosarum, septatarum, fuscarum, 0,5 1 lat.,

insidentia. Asci elliptici vel pyriformes, superne incrassati, late

sessiles, 30 — 35 u long., 10 « lat., 8 spori. Sporidia subfusiformia,

recta, 4 cellulares, hyalina, 14—15 u long., 2 u lat., irregulariter posita.

Paraphyses tenerae, ascos ambientes.

In foliis vivis Esterhazyae. Itatiaia. März 1894. — E. Ule n. 2087.

Steht offenbar dem Asteridium Xerophylli Ellis nach der Be-

schreibung nahe, hat aber kleinere Perithecien und kleinere Sporen.

Dimerosporium annulatum Rehm nov. spec.

Perithecia epiphylla, foliorum vivorum superficie haud mutata

insidentia, maculas rotundas confluentesque, 2—5 « diam. formantıa,

ibique circinatim congregata, subglobosa, glabra, astoma, paren-

chymatice contexta, 90-120 « diam., bası hyphis radıantibus 10— 20,

subreetis, simplicibus, septatis, fuscis, ad finem dilutioribus acutatisque,

ca. 180 u long., 5 u lat., obsessa.

Ascı elliptiei, sessiles, apice obtusati, 30—40 « long., 8 u lat.,

8 spori. Sporidia subclavata, obtusa, recta, 2 cellularia, interdum

guttulis 4 oleosis praedita, interdum medio subeonstricta, hyalına,

9 u long., 2,5—3 u lat., disticha. Paraphyses ramosae, septatae,

hyalinae, 2 u cr.

In fol. vivis Erigerontis maximi. Itatiaia. März 1894. Lea

n. 2098,

Ophiodothis Gaduae Rehm nov. spec.

Stromata dispersa, primo immersa, dein emergentia et sessilia,

lentiformia, fusco-nigra, subscabra, coriaceca, 1—2 mm lat. et alt.

Loculi permulti, parenchymatici, subhyalino polystiche immersi, globu-

losi, — 150 « diam. Asci cylindracei, apice rotundati atque valde

incrassati, ca. 120 « long., 5 « lat., 8 spori. Sporidia filiformia, recta

1 ? cellularia, hyalina, parellele posita, asci longitudine. Paraphyses

desunt.

In ramulis Gaduae. Campo Bello. Febr. 1894. — E. Ule n. 2106.

Die Stromata sind von dicker, brauner Rindenschicht begrenzt

und sitzen in unverfärbter Umgebung. Steht der Ophiodothis vorax

54 OÖ, Pazschke,

(Berk.) sehr nahe, ist aber davon durch viel derbere Stromata ver-

schieden.

Ophiodothis linearis Rehm nov. spec.

Stromata singularia vel gregaria, linearia, recta, sessilia, 1—4 cm

longa, 1 mm lata, extus intusque atra, superficie vix papillulata, ab

epidermide folii tenuissime flavide marginata. Loculi stromatis

minutissimi. Asci cylindracei, apice valde incrassati et rotundati,

— 75 «a lg., 7 « lat., 8 spori. Sporidia filiformia, recta, continua,

hyalina, 60 « Ig., 1 « lat. parellele posita. Paraphyses desunt.

In folis vivis Chusqueae. Campo Bello. Februar 1894. — E. Ule

n.: 2108.

Die jungen Stromata bilden eine zarte, später sich etwas ver-

breiternde und gelblich vom Blatte umsäumte gerade Linie und

überragen kaum etwas dessen Oberfläche. Allmählich spaltet sich

das Blatt unter dem Stroma und stirbt ab.

Discomycetes.

Rhytisma Itatiaiae Rehm nov. spec.

Apothecia epiphylla, immersa et cum epidermide foliorum vivorum

superiore connata, eamque irregulariter corrugatam, atro-nitidam

plus minusve pustulatim elevantia, maculis rotundis vel oblongis

0,5—12 mm longis latisque, denique partem nigratam longitudinaliter

vel e centro radiatim rimose dilacerantia, discum aperientia, intus

hyalina. Asci clavati, apice rotundati, curvati, 75-90 u lg., 18 u lat.,

8 spori. Sporidia subfusiformia vel elongato-cuneiformia, apice

superiore plerumque latiore, recta vel subcurvata, 1-cellularia, hyalina,

dein flavidula, 20- 30 a Ig., 5-6 zı lat., disticha. Paraphyses filiformes,

3 u crassae, apice subcurvatae, hyalinae,

In pagina superiore foliorum vivorum Agaristae intermediae.

Itatiaia. Februar 1894. — E. Ule n. 2084.

Hennings (Fungi goyazenses pag. 113) hat ebenfalls ein Rhytisma

auf Leucothoe, Rh. (Criella) Ieucotho@s beschrieben. Dasselbe ist

sowohl durch die Fleckenform, die eingewachsenen Apothecien, als

insbesondere durch die fast eiförmigen, innerlich gelben und fein-

körnigen, mit einer auffallend dicken Aussenhaut, welche sich am

unteren Ende zu einem kugligen Fortsatz ausbildet, versehenen

Sporen von der vorliegenden, ein echtes Rhytisma vorstellende Art

ganz verschieden, wie ein von Hennings mir zugegangenes Original-

Exemplar beweist.

Calloria quitensis Pat. Bull. soc. myc. VIII. pag. 126.

In foliis vivis Rubiaceae indeterm, Itatiaia. März 1894. — E. Ule

n. 2091.

U Fu

II. Verzeichniss brasilianischer von E. Ule gesammelter Pilze. 55

Lachnea umbrorum (Fr.) cfr. Rehm Discomyceten pag. 1060.

Forma major.

Ad terram in silva (1800 m). Itatiaia. März 1894. — E. Ule

n. 2076.

Geoglossum xylarioides Rehm nov. spec.

Ascomata erecta, clavula elongato-ovata, obtusa, atra, subcalva,

compressa, 2—5 mm Ig., 0,2 mm lat., (sicca interdum longitudinaliter

sulcata), in stipitem cylindricum, atrum, glabrum, 3-5 mm Ieg.,

0,3—0,5 mm lat. sensim abeuntia. Asci clavati, apice rotundatı et

incrassati, — 120 u lg, 18 « lat, 8 spori. Sporidia cylindrica,

recta vel subcurvata, obtusa, primitus hyalina, dein fusca, transverse

7 septata, quaque cellula nucleo oleoso magno praedita, 45— 60 u Ig.,

septatae, apice subcurvatae, —5 ı crassae et fuscae. Pori ascorum

J. ope valde coerulei tincti.

Ad terram. Campo von Itatiaia. März 1894. — E. Ule n. 2077.

Von G. pumilum Winter, welches von ziemlich gleicher Grösse,

ıı lat., parellele longitudinaliter posita. Paraphyses fliformes,

durch nur 8zellige, um die Hälfte kleinere Sporen ganz verschieden.

Sphaeroidaceae.

Darluca Filum (Biv) cfr. Sacc. Syll. II., pag. 410. Sphaeria

Filum Biv. Bern. Stirp. rar. Siciliae IIl., pag. 12

Ad uredinem parasitans. In fructibus Rhynchosporae aurcac.

Campo Bello. Febr. 1394. — E. Ule n. 2103.

Phyllosticta Amaryllidis Bresadola nov. spec.

Peritheciis densissime gregariis, amphigenis, minimis, nigris

obovatis, maculas nigras parvas vel confluento-elongatos efficientibus,

70- 96. diam; sporulis eylindraceis, saepe ad latera utrinque compressa,

apicibus convexis, biguttulatis, 4 « Ig., IV, .. lat.

In foliis languidis Amaryllidis spec. Itatiata März 1894. —

E. Ule n. 2100.

Habitu Phyllostictae melanoplacae Thüm., cui forte nimis affınıs,

et a qua sporis non truncatis praecipue diflert.

Myxomycetes.

Leocarpus fragilis (Dicks.) Syn. Lycoperdon fragile Dicks.

Crypt. Taf. 111. fig. 3.

In silva. 2000 m. Itatiaia März 1894. — E. Ule n. 2075.

Leipzig, den 20. November 1895.

ENTER

a a u ©, 0 2 in Di

Zwei neue deutsche Pilze.

Von G. Lindau.

(Mit einer Textfigur.)

Die beiden im Folgenden beschriebenen Pilze kamen mir zu-

fällig in die Hand und erwiesen sich als so abweichend von bisher

bekannten Arten, dass ich nicht Anstand nehme, sie als neu zu

beschreiben. Herr Medicinalrath Dr. H. Rehm, der beste Ascomy-

cetenkenner, bestätigte mir meine Bestimmungen.

Chaetomium marchicum Lindau n. sp.

Perithecien mit nur einschichtiger Wandung, rund, kahl, auf

vereinzelten Hyphen oberflächlich aufsitzend, anfangs gelblich, später

dunkelbraun, 180-230 « im Durchmesser, am Scheitel mit einer

Oeffnung, die von starren, bis 80 « langen wenigen hyalinen Borsten

umgeben wird, an deren Grunde sich die angrenzenden Wandzellen

etwas verlängern. Conidienträger

fehlen. Schläuche kurz, keulig, fast

ganz von den Sporen ausgefüllt,

58— 70 u lang und 27—29 u breit.

Sporen citronenförmig, 20—24 X

11—14 «u, dunkelbraun bis schwarz-

braun. Paraphysen?

Auf faulenden Blättern als kleine

zerstreute braune Punkte auftretend,

Entwickelte sich auf Laub, das von

Dr. P. Graebner bei Finkenkrug bei

Berlin gesammelt war. Ende Mai 1895.

Die neue Art der Gattung ist

hauptsächlich durch das Fehlen der

Conidienträger und die braunen,

citronenförmigen Sporen gut charak-

terisirt. Die Sporen wurden inWasser

und Bierwürze ausgesäet, keimten

aber nicht. Ebenso wenig ist bis-

her (seit ®/, Jahr) die Keimung auf

faulendem Laub erfolg. Da das

Material nur sehr spärlich und beim Funde schon überreif war, so

gelang es nicht, Paraphysen mit Sicherheit zu constatiren, Dass

Zwei neue deutsche Pilze. 57

Conidien vollständig fehlen an den Perithecien, davon habe ich mich

sehr oft überzeugen können.

Die Art weicht also von Chaetomium, mit dem sie fast in allen

Punkten übereinstimmt, durch das Fehlen der Conidienträger am

Perithecium ab. Vielleicht wäre es deshalb gerechtfertigt, eine neue,

neben Chaetomium zu stellende Gattung zu begründen. Ich ziehe

es indessen vor, nur eine Untergattung von Chaetomium Oxy-

chaetomium aufzustellen, die durch das Fehlen der Conidienträger

und schwarzbraune citronenförmige Ascosporen charakterisirt sein

würde. Ein endgültiges Urtheil, ob eine neue Gattung oder nur

eine Untergattung vorliegt, wird sich erst fällen lassen, wenn die

Entwicklungsgeschichte des Pilzes durch Cultur der Sporen näher

bekannt ist.

Peziza (Humaria) alpigena Lindau n. sp.

Fruchtkörper vereinzelt, napfig, ungestielt, gelb bis gelblich-

orange, etwa !;—°?, mm breit, im trocknen Zustande etwas zu-

sammengefaltet und kaum sichtbar, kahl Fruchtscheibe wenig heller,

flach mit niedrigem Rand. Schläuche keulig, nach oben ein wenig

verschmälert und abgerundet, 60—70 « lang und 8— 10 u

breit an der breitesten Stelle, durch Jod nicht blau gefärbt. Sporen

ellipsoidisch, beidendig stumpf oder spindelförmig mit fast zugespitzten

Enden, hyalin, ohne Oeltropfen (ob immer?), 11-14 X 3-4 u.

Paraphysen fädig, nach der Spitze nur wenig angeschwollen, bis 4 «

breit, hyalin, unverzweigt, durch Jod braun gefärbt.

Auf zusammengeknäueltem Papier auf dem Kaiserjoch bei

Pettneu in Tyrol etwa in Höhe von 1800 m von mir im August 1894

gefunden.

Der kleine sehr unscheinbare Pilz wächst auf verrottetem Papier

und dürfte bisher nur übersehen sein. Die mangelnde Jodreaction

weist ihm seine Stellung bei Humaria an. Von den gelb gefärbten

Arten dieser Gruppe unterscheidet er sich wesentlich durch seine

Kleinheit und die fast spindelförmigen, kleinen Sporen.

Erklärung der Figuren.

A.—C. Chaetomium marchicum. A. Optischer Längsschnitt durch ein reifes

Perithecium c. °3°/,. B. Schläuche c. 3%%/,. C. Sporen c. *%/,.

D.—E. Peziza alpigena, D. Schläuche mit Paraphyse c. #%P/,. E. Sporen c. #%|,.

ER FE 3 nn len, Vasen nn an N ee akut = 5

Nachtrag

zu der in der Hedwigia (Bd. XXXII 1893) erschienenen

Arbeit über die von mir im Jahre 1888 in Nord-Amerika

gesammelten Laubmoose.

Zusammengestellt von Dr. Röll in Darmstadt.

Seit der 1893 erfolgten Veröffentlichung der von mir im Jahre

1888 ın Nord- Amerika gesammelten Moose sind besonders durch

Herrn Professor Dr. Kindberg in Linköping in Schweden, Herrn Renauld

in Monaco und Herrn Cardot in Stenay in Frankreich mehrere neue

Arten und Unterarten der nordamerikanischen l.aubmoosflora entdeckt

worden. Sie sind zum Theil beschrieben in dem stattlichen Werk:

„Catalogue of Canadian Plants, Part. VI. Musci, by John Macoun and

Prof. N. C. Kindberg, Montreal 1892“, theils in einem Manuscript

von Kindberg: „Mosses (Bryinea) of Europe and N. America synopti-

cally described“, das demnächst zur Veröffentlichung gelangen wird.

In dasselbe sind auch die im Folgenden aufgezählten neuen Arten

und Unterarten aufgenommen, die Herr Kindberg bei der Durchsicht

der von mir in Nord-Amerika gesammelten und zum Theil noch

unbestimmten Laubmoose gefunden und aufgestellt hat.

Ferner hat Herr F. Renauld in Monaco in seiner 1894 erschienenen

Arbeit über die Harpidien (Extrait du Muscologia Gallica, 12. livrai-

son, mars 1894, Section Harpidium par F.Renauld) eine Neubearbeitung

dieser Gruppe der Hypna veröffentlicht, aus der ich die betreffenden

Aenderungen am Schluss dieses Verzeichnisses zusammengestellt habe.

Endlich sind die in den von den Herren F. Renauld und J. Cardot

im October 1894 herausgegebenen „Musci Americae sept. exsiccati

Observations et Rectifications sur les especes distribudes“ enthaltenen

bezüglichen Bemerkungen über Thamnium Leibergii Britt. und Bryum

ontariense Kindbg. bei den betreffenden Moosen angeführt.

Dadurch hat sich die Anzahl der neuen Laubmoos-Arten von 25

auf 36, die der neuen Unterarten von 3 auf 9 und die der neuen

Varietäten von 17 auf 26 erhöht,

Nachtrag z. d. i. d. Hedwigia (Bd. NXNXI 1893) erschienenen Arbeit etc. 59

I. Neubestimmungen von Herrn Kindberg.

Andreaea Macounii Kindb. (Bull. Torr. Bot. Club April 1890.)

Unter No.1005 als A. nivalis Hook. in meinen nordamerikanischen

lLaubmoosen (Hedwigia 1893) angeführt, von dieser hauptsächlich

durch die langauslaufende Rippe verschieden.

Oregon: Mt. Hood, 7000' 1888. — Ausserdem 1889 von Macoun

am Griffin Lake in den Gold Ranges von Canada bei 7500 gesammelt.

Pleuridium Bolanderi CM.

Blätter (auch die oberen) allmählich pfriemenförmig verschmälert.

INlinois: Chicago, Graceland, im Laubwald. Unter No. 1712 als

Pl. alternifolium Rabenh.

Weisia viridula(l..) Hedw. subsp. longirostris Kdbg. subsp.n.

Kapsel weitmündig, meist kürzer als der Schnabel des Deckels.

Peristom oft verkümmert.

In Hedwigia 1893 als wahrscheinlich zu var. gymnostomoides

(Brid.) Müll. gehörig angeführt. No. 1725 28.

INlinois: Waukegan bei Chicago, an sandigen Orten 1888.

Dicranoweisia Roellii Kindbg. sp. n.

Blätter lang, pfriemlich zugespitzt, fast allmählich verschmälert,

nicht zurückgerollt,; basale Flügelzellen nicht abgegrenzt. Rippe in

allen Blättern auslaufend. Perichätialblätter meist plötzlich zu einer

langen, schmalen, von der Rippe oft ganz gefüllten Spitze zusammen-

gezogen. Kapsel symmetrisch, kugelig-elliptisch, lichtbraun, aufrecht;

Zähne dunkelroth. Fruchtstiel trocken oft gekrümmt, feucht sich

aufrichtend. Rasen schr dicht; einhäusig. Nahe verwandt mit

Dicranoweisia obliqua Kindbg., die durch deutliche Flügelzellen, durch

die gekrümmte, unsymmetrische, oft tropfige Kapsel und den nicht

gekrümmten Stiel verschieden ist.

Oregon: Mt. Hood, 8000°. Unter No. 988--91 als Dier. cirrhata

(L..) Lindb.

Dichodontium subflavescens Kindbg. sp. n.

Dem D. flavescens (Dicks.) ähnlich durch die langen, sehr locker

gestellten und fast glatten Blätter. Weicht von D. pellucidum Sch.

ab: Blätter länger, locker gestellt, spitz und mehr gesägt, oft bis

unter die Mitte. Perichätialblätter schmäler, lang zugespitzt, meist

pfriemenförmig, im obersten Theil der Spitze von der zuweilen aus-

laufenden Rippe fast ganz ausgefüllt. Kapsel aufrecht, symmetrisch;

Zähne dunkel-purpurn; Fruchtstiel lang, bleichroth. Männliche

Pflanzen mit den fruchttragenden gemischt; ihre Blätter zuweilen

Ba 2: ce

60 Röll.

stumpf, Perigonialblätter gross, lang zugespitzt mit nicht auslaufender

Rippe. Rasen hoch, bis zu den grünen Astspitzen verfilzt.

Wash.: Tacoma. No. 156 und 157 als Dichod. pellucidum Sch.

v. flavescens (Dicks.).

Dieranum fulvellum (Dicks.) Sch.

Cascaden: Mt. Hood, Or. 7000' Felsen. Unter Dicr. hyperboreum

(Gunn.) Sm. No. 993.

Dicranum Starkei W. et M. var. pygmaeum Kindb. n. var.

Blätter kleiner, die obersten sichelförmig gekrümmt; Perichätial-

blätter mit langer Borste (länger als bei der gewöhnlichen Form von

D. Starkei). Kapsel schr klein; Stiel kurz, ca. 1 cm.

Oregon: Mt. Hood, an Felsen, 8000‘. Unter No. 996 als Dicr.

falcatum Hedw.

Dicranum Roellii Kindb. n. sp.

Mit Dicr. scoparium Hedw. nahe verwandt, aber die Blattspitze

schwach crenulirt, die oberen Zellen weniger getüpfelt, die Rippe

kürzer, am Rücken fast glatt. Von Diecr. Bonjeani De Not. weicht

es durch nicht sparrige und nicht wellige Blätter ab, deren Rippe

zuweilen 2 Lamellen zeigt.

Vancouver Isl.: Victoria. No. 8 und 10 ex p. als Dicr. Bonjeani

De Not. var. Roellii Barnes var. n.

Dicranum Roellii Kindb. var. Schlotthaueri (Barnes in part.)

Kindb.

Blätter kürzer, breiter zugespitzt, obere Zellen meist fast ellip-

tisch, Rippe ohne Lamellen. In der Tracht dem Dicr. brachycaulon

Kindb. ähnlich.

Yellowstone Nat. Park,: Wyoming 7000. No. 1441 als Dicr.

Bonjeani De Not. var. Schlotthaueri Barnes.

Dicranum Howelliiı Ren. et Card.

Wash.: Tacoma. No. 170 als D. scopar. Wash.: Cascaden bei

Enumclaw 2000‘, No. 324 Kahchess Lake 3000°. No. 781 als D. scopar.

Idaho: Coeur d’Alene 3000. No. 1145 als Dier. scoparium Hedw.

Dieranum Howellii Ren. et Card. var. trachyneuron

Kindb. (D. Drummondi C.M. var. trachyneuron Kindb. Canad. PL.)

Wash.: Seattle. No. 166 als Dier. Bonjeani De Not.

Dicranum Howellii Ren. et Card. * angustifolium Kindb.

(D. angustifol. Kindb. Bull. Torr. Vol. XVII.)

Vancouver Isl.: Victoria. No. 9, 10 exp. unter D. scoparium Hedw.

Dicranum majus Turn.

Indiana: Hobart, CalumetRiver. No. 1746 als Dicr. scoparium Hedw,

Nachtrag z.d.i.d. Hedwigia (Bd. NXXII 1893) erschienenen Arbeit SIEHE GT

Dicranum scoparium Hedw. var. eurydictyon Kindb. var.n.

Blätter meist wenig gezähnelt auf den 2 Rippenlamellen; Zellen

weit, die oberen elliptisch, die unteren meist fast länglich, fast alle

ohne Tüpfel.

Illinois: Graceland bei Chicago. Unter No. 1749 als Dicr. Bon-

jeani De Not. var. alatum Barnes v. n.

Dicr. scoparium Hedw. * involutum Kindb. subsp. n.

Wash.: Cascaden, Easton st. No. 554 ex parte, sterile Exem-

plare mit welligen Blättern unter D. scopar. var, paludosum Sch.

Dicranum perichaetiale Kindb. n. sp.

In der Tracht dem D. majus und D. scoparıum ähnlich, mit

nicht welligen Blättern; mit D. sulcatum Kindb. in den sehr kurzen,

mit weit längerer Borste versehenen Perichätialblättern überein-

stimmend. Weicht von D. sulcatum ab: Blätter grösser und breiter,

weder gekräuselt, noch geschlängelt, nur die obersten fast sichelförmig

gebogen, weniger zerbrechlich. Zellen grösser, schmal linealisch, wie

bei D. scoparium, doch nicht oder sehr spärlich getüpfelt; Rippe

schmäler, deutlich gezähnelt und nicht auslaufend; Kapsel grösser.

Blätter länger zugespitzt, als bei D. scoparium.

Wash.: Cascaden, Easton cfr. No. 554 exp. als D. scoparium

Hedw. var. paludosum Sch. cfr.

Dicranum hyalinum Kindb. n. sp.

Blätter rinnenförmig, schmal, mit ziemlich langer Spitze, im

oberen Theil schwach gezähnelt. Eckzellen fast wasserhell, recht-

eckig und nicht gut begrenzt; oberste Blattzellen elliptisch, die übrigen

schmal linealisch, wasserhell, nicht getüpfelt; Rippe schmal, nur an

der Basis schr breit, im oberen Theil der Blattspitze schwach ge-

zähnelt. Rasen locker, schwach filzig.

Yellowstone Nat. Park, Wyoming 7000. Unter No. 1442 als

D. scoparium Hedw.

Dicranum subpalustre C. M. et Kindb. (Catal. of Canad.

Pl. S. 33.)

Vancouver Isl.: Victoria. Unter No. 10 als D. Bonjeani De Not.

var. foliis fragilibus: Idaho, Coeur d’Alöne 3000‘. Unter No, 1146

als D. Bonjeani De Not.

Dicranum Drummondii C. M.

Vancouver Isl.: Victoria. Unter No. 7 als D. scoparium Hedw.

var. recurvatum Brid.

Dicranum undulifolium C.M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 32.)

Von D. Bonjeani De Not. hauptsächlich durch die nicht sparrigen

Blätter verschieden.

62 Röll,

Vancouver Isl.: Victoria. No. 6b als D. scopar. v. orthophyllum

Brid. Astoria: Oreg. No. 261 als D. Bonjeani var. Schlotthaueri

Barnes.

Dicranum crispulum C. M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 27.)

Wash.: Cascaden, Rigi am Clealum Lake. No. 882 unter D.

Muchlenbeckii Br. et Sch. YVellowstone Nat. Park 7000‘. Unter

No. 1445 als D. Muehlenbeckii Br. a Sch.

Dicranum fuscescens Turn.

Wash.: Cascad. Rigi am Clealum Lake. Unter No. 881 als D.

Muehlenbeckii Br. et Sch. ?

Diceranum Muehlenbeckii Br. et Sch.

var. foliis minus distincte convolutis, decurrentibus.

Yellowstone Nat. Park, Wyoming No. 1445.

Diceranum leucobasis C.M. et Kindb. (Canadian Pl. S. 30.)

Dem Dier. congestum Brid. habituell ähnlich, mit gekielten, zer-

brechlichen Blättern.

Washington, Cascaden, am Rigi bei 6000‘ auf Felsen, mit Dicr.

Starkii W. et M. No. 880 exp. — und am Kahchess Lake 3000‘.

No. 785 als Dicr. scoparium Hedw. var. crispulum De Not.? 1890

auch von Macoun am Columbia bei Revelstoke B. C. und an Rogers

Pass in den Selkirk Mts. am Fuss von Baumstämmen gesammelt.

Dicranum canadense Kindb. (Bull. Torr. Bot. Club.

Vol. XVII. 87.)

Indiana: Calumet River bei Hobart. Unter No. 1747 als Dicr.

scoparium L. 1889 von Macoun bei Moodyville, Burrard Inlet, B. C.

gesammelt.

Pottia Heimii Turn.

Rocky M.: Deer Lodge, Mont. Unter No. 1351—2 als Barbula

rubella Mitt. cfr.

Barbula robustifolia C. M. et Kindb. (Canadian Pl. S. 56.)

Cascaden: Enumclaw, Wash. Unter No. 332 als B. elata Dur.

et Mont. 1875 von Macoun bei Victoria, Vanc. gesammelt.

Barbula artocarpa Lesquereux.

Verwandt mit B. gracilis (Schleich.) Schwägr.

Cascaden: Mt. Hood, Oregon, Krater bei 11000°. No. 1003 und

1007, letztere mit Grimmia incurva Schwg. gemischt.

Barbula sparsidens C. M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 54.)

Wisconsin, Princeton. Unter No. 1603 als B. fallax Hedw. cfr.

Barbula subgracilis C. M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 53.)

Rocky M.: Helena, Mont. Unter No. 1344 als B. fallax Hedw.

Nachtrag z.d.i.d. Hedwigia (Bd. NNXIT 1893) erschienenen Arbeit etc. 63

Barbula chrysopoda €. M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 57.)

Vancouver Isl.: Victoria. Unter No. 14 als B. convoluta Hedw. cfr.

Barbula sinuosa (Wils.) Braith.

Cascaden: Easton, Wash. Unter No. 565 als B. cylindrica Sch.

st. und Weston, Wash. No. 476 als B. elata Dur. et Mont. st.

Barbula vinealis Brid.

Cascaden: Roslyn, Wash. No. 560 als B. ceylindrica Sch. und

Enumclaw, Wash. No. 328 als B. cylindrica Sch.

Barbula circinnatula C. M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 56.)

Vancouver Isl.: Victoria. No. 11-13 als B. cylindrica Sch.

Barbula tortellifolia C. M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 56.)

Vancouver Isl.: Victoria. No. 15, 17 als B. eylindrica Sch.

Barbula elata Dur. et Mont.

Rocky Mount.: Ravalli, Mont. No. 1254 als B. cylindrica Sch.

Forma minor, caule brevi Hood River, —_ 1010,

Barbula pseudo-aciphylla Kindb. sp.

Weicht durch die wasserhelle Ei und ihre gleichförmigen,

nicht getüpfelten Zellen von B. ruralis ab, von B. norvegica (F. Weber

1804) Lindb. (B. aciphylla Br. eur. 1842) durch die stumpfen Blätter.

Rippe oben sehr rauh; Haarspitze nur unten oder in der oberen

Hälfte roth. Kapsel ie schmal. Peristom unbekannt.

Auch von Macoun gefunden.

Cascaden: Roslyn, Wash. No. 559 als B. montana Lindb. cfr.

Rocky M.: Helena, Mont. No. 1353 als B. montana Lindb.

Barbula brachyangia C. M. et Kindb. (Canad. Pl. S. 59.)

Cascaden: Thorp bei Ellensburg, Wash. No. 943 als B. montana

I.dbg. Rocky Mount: Coeur d’Alene, Id. 1150 und Helena, Mont.

1350 als B. montana Ldbg.

Barbula laeviuscula Kindb. (Cat. of Canad. Musci S. 265.)

Cascaden: Mt. Hood, Or. cfr. 1009 als B. princeps De Not.

Barbula pulvinata Jur. var. lato-excisa C. M. et Kindb.

(Barbula lato-excisa in Canad. P. S. 60.)

Vancouver Isl.: Victoria cfr. No. 18 als Tort. laevipila Schwgr.

Barbula montana (Esenb.) Kindb.

Rocky Mount: Garrison, Mont. Unter No. 1359 als B. ruralis L.

Barbula megalocarpa Kindb. (Bull. Torr. Bot. Club XVI, 92,

Canad. Pl. S. 59.)

Cascaden: Easton, Wash. Unter No. 561, 563 exp. steril als

B. ruralis L. Rigi am Clealum Lake cfr. 883, Thorp bei Ellensburg

941, 942. Rocky Mount: Ravallin, Mont. 1259, Garrison Mont.

1356 —58 unter B. ruralis L.

Ba 2

64 Röll.

Barbula submegalocarpa Kindb. n. sp.

Weicht von B. ruralis ab: Blätter länger und schmäler, oben

weniger zurückgerollt, von der breiten Basis verschmälert und oben

fast lineal; äussere Basalzellen goldgelb und nicht getüpfelt. Haar-

spitze oft in der unteren Hälfte roth. Peristom wie bei B. megalo-

carpa Kindb.

Cascaden: Easton, Wash. No. 561, 563 ex p. cfr. Rocky Mount.

Nat. Park, Grand Canon 6000‘° 1450, 1452 als B. ruralis L.

Auch von Macoun gefunden.

Herr Kindberg theilte mir mit, dass er aus dem pacifischen Ge-

biet keine echte Barbula ruralis L. gesehen habe.

Grimmia tortifolia Kindb. (Enum. Reg. Dovr. 1888).

Steht zwischen G. funalis und G. torquata. Blätter aus scheidiger

Basis rasch verschmälert, Zellen selten gelblich, die oberen kurz, gut

begrenzt und nicht buchtig, grösser als bei G. funalis, die unteren

kürzer als bei G. torquata. Eckzellen meist undeutlich. Haarspitze

kurz oder fehlend. Rasen dicht, zusammenhängend, niedrig. Frucht

selten. Kapselstiel aufrecht, gerade.

var. calvescens Kindb. v. n.

Vancouver Isl.: Victoria. Unter No. 23 als Amphoridium lappo-

nicum Sch. v. compactum.

Grimmia tortifolia Kindb. * pellucida Kindb. subsp. n.

Blätter grösser, hellgrün, eilanzettlich und fast spitz, meist haarlos,

zuweilen auf einer Seite zurückgerollt. Zellen bleich und durchscheinend,

die meisten fast quadratisch und nicht buchtig. Rippe durchscheinend.

Rasen trocken bleichgrün. Frucht unbekannt.

Yellowstone Nat. Park, Wyom., Upper Falls. No. 1478 als Gr.

funalis Schwgr.

Grimmia depilata Kindb. (Canadian Pl. S. 69.)

Princeton, Wisc. No. 1606.

1887 von Macoun auf Mt. Benson bei Nanaimo auf Vancouver

Isl. gesammelt.

Grimmia tenerrima Ren. et Card.

Rocky M.: Garrison, Mont. No. 1343.

Grimmia incurva Schwgr.

Cascaden: Mt. Hood, Oreg. No. 1007, mit Barb. artocarpa Lesqu.

gemischt.

Racomitrium affine (Schleich.) Lindbg.

Cascaden: Mt. Hood, Oregon. 1033 (als Racom. heterostichum

Brid.). Yakima River bei Easton Wash. (586b).

Nachtrag z.d. i. d. Hedwigia (Bd. XXXII 1893) erschienenen Arbeit etc. 65

Racomitrium heterostichum Brid. var. micropoides Kindb.

var.n.

Obere Blattzellen oft schmal, wie bei Rac. microcarpum Brid.

Cascaden: Enumclaw, Wash. No. 350.

Racomitrium micropus Kindb. (Canad. Pl. S. 77.)

Dem Racomitrium affıne Ldbg. ähnlich, aber mit papillösen

Blättern.

Cascaden: Kahchess Lake bei Easton, Wash. Unter No. 799

als Racomitrium patens bezeichnet.

1889 auch von Macoun am Griffin Lake B. C. und bei Hector

in den Rocky Mount. gesammelt.

Amphoridium californicum Lesqu. et James. (Mosses of

N. Amer. 159.)

Cascaden: Enumclaw, Wash. No. 351.

Orthotrichum Killiasıı ©. M.

Rocky M.: Yellowstone Nat. Park. No. 1492.

In Amerika bisher nur aus Grönland bekannt.

Orthotrichum exiguum Sulliv.

Rocky M.: Yellowstone. Nat. Park. 1482.

Orthotrichum Douglasıi Duby;, Lesqu. et Jam. man.

Rocky M.: Yellowstone Nat. Park. No. 1487a als O. rupestre

Schleich.

Nach Kindberg's Auffassung sind ferner ÖOrthotrichum steno-

carpum Vent. und ©. Schlotthaueri Vent., wie auch ©. lonchothe-

cium C. M. et Kindb. Unterarten von Orthotr. Roellii Vent.

Orthotr. praemorsum Vent. sp. n. ist mit OÖ. acuminatum Phil. (einer

Form von ©. affıne Sch. mit verkümmertem Peristom) überein-

stimmend; das Herrn Kindberg mitgetheilte Exemplar von O. rhabdo-

phorum Vent. sp. n. gehört vermuthlich zu einer Subspecies von

dem bisher in Nord- Amerika nicht gefundenen ©. stramineum

Hornsch., obgleich die betreffende Art nach der Beschreibung mit

OÖ. speciosum Nees verwandt sein sollte, die Spaltöffnungen sind

eingesenkt.

EncalyptaexstinctoriaSwartz subsp. tenellaKindb. subsp.n.

Pflanze sehr klein, Blätter kürzer, fast elliptisch, an der Spitze

meist breit abgerundet, zuweilen mit langer Haarspitze. Kapsel und

die weissliche, nicht oder kaum merklich rauhe Haube weit kleiner;

Peristom haftend.

Rocky Mount.: Helena, Mont. Unter No. 1275 als Encal. vul-

garıs Hedw.

Hedwigia Ba, XNXAV. 1896. "

nz u

Röll.

Encalypta Macounii Aust.

Kapsel mit Hals und trocken aufrechten Zähnen.

Cascaden: Easton (Wash.) 608. Rocky M.: Coeur d'Alöne, Id.

1178 (als Encal. ciliata Hedw.).

Tetraphis pellucida Hedw. var. obtusifolia Kindb. var. n.

Cascaden: Easton, Wash. No. 610.

Funaria convoluta Hampe; Lesqu. et Jam. man...

Cascaden: Easton. (611 als Funaria hygrometrica L.)

Webera albicans Sch. subsp. sparsa Hpe.

Cascaden: Mt. Hood, Gletscherbach bei 7000‘ No. 1050 und

Rocky M.: Yellowstone Nat. Park No. 1551 (als Web. albicans Sch.).

Bryum alpinum L. subsp. appressum Kindb. subsp. n.

Von der Hauptart verschieden durch die schmalen, lanzettlichen,

kurz zugespitzten, spitzen oder oft stumpflichen, ringsum zurück-

gerollten, nicht glänzenden und sehr stark angedrückten Blätter;

Insertion und Rippe nicht roth, Kapsel braun, Rasen spärlich

wurzelfilzig.

Von Br. alpinum L. var. brevifolium Myr. (Br. Muehlenbeckii

der meisten Autoren) besonders durch längere, oft spitze Blätter

verschieden. Das echte Br. Muchlenbeckii Br. Eur. hat grössere,

nicht angedrückte Blätter, deren Basalzellen neben der Rippe tief-

roth sind.

Cascaden: Easton, Wash. No. 621 als Bryum Muehlenbeckii

Br. Eur.

Bryum occidentale Sulliv.; Lesqu. et Jam. man.

Rocky M.: Garrison, Mont. No. 1885, als Br. capillare L. ad var.

carinthiacum vergens.

Bryum oreganum Sulliv.?

Rocky M.: National Park, Wyoming. 1517 als Br. capillare L. ad

var, carinthiacum vergens.

Bryum torquescens Br. et Sch.

Victoria, Vancouver Island. No. 63 als Br. capillare L.

Bryum squarrosum Kindb. sp. n.

Unfruchtbare Stengel mit herablaufenden, sehr entfernten, auch

in trockenem Zustand sparrigen Blättern; fruchtbare Stengel sehr

kurz, mit wenigen dicht gehäuften Blättern. Blätter der Sprossen

oft zugespitzt, breit zurückgerollt und gesäumt, meist gezähnelt.

Rippe zuweilen verkürzt; Haarspitze steif und bogenförmig gekrümmt,

gelblich. Blätter des fruchtenden Stengels unterhalb der Mitte breiter

gezähnelt, weniger zurückgerollt und meist nicht deutlich gesäumt.

Nachtrag z. d. i.d. Hedwigia (Bd. XXXII 1893) erschienenen Arbeit etc. 67

Kapsel kaum so gross wie bei der gewöhnlichen Form von Bryum

capillare, länger als der Ilals. Rasen röthlich-braun. Zweihäusig.

Verwandt mit Br. provinciale Phil. und Br. Donii Grev., beson-

ders übereinstimmend in den nicht gedrehten Blättern und deren

Gestalt; eigenthümlich ist der kurze Fruchtstengel und das steife,

nadelförmige, gekrümmte Spitzchen der Blätter. Bryum capillare hat

dagegen zungenförmige Blätter.

Astoria, Oreg. No. 274 und 275 als Br. capillare L.

Bryum Donii Grev.

Vancouver Isl.: Victoria. No. 63a als capillare L.

Bryum ontariense Kindb. (Bull. Torr. Bot. Club XVI. 96).

Als Bryum roseum Schreb. angeführt von Illinois: Chicago

(1797-98). Indiana: lHlobart, Calumet River (1795).

Renauld und Cardot erkennen Br. ontariense Kindb. in den Ob-

servations 1894 als gute Art an, die in Amerika Bryum roseum Schr.

ähnlich vertritt, wie Polytrich. ohioense R. et C. das europäische P.

formosum Hedw.

Philonotis marchica Brid.

Rocky M.: Yellowstone Nat. Park. No. 1497 als Phil. fontana

Brid. Kilborn, Wisc.

Philonotis acutiflora Kindb. sp. n.

Perigonialblätter spitz und gerippt.

Victoria, Vancouver Isl. No. 52 als Phil. fontana Brid.

Philonotis glabriuscula Kindb. (Canadian Pl. S. 107.)

Rocky M.; Yellowstone Nat.Park. No. 1497 b als Phil. fontana Brid

Philonotis Muehlenbereii Brid.

Rocky M.: Ravalli, Mont. No. 1279 als Phil. fontana Brid. f. gracile?

Catharinea Selwyni Aust.

Mit Dicr. heteromalla im Moor bei Enumclaw, Wash.

Polytrichum sexangulare Flörke var. nivale Kindb. var. n.

Blätter mit kurzem, rothen Spitzchen.

Cascaden: Mt. Hood. No. 1092,

PseudoleskeafalcicuspisC.M.etKindb. (Canadian Pl. S. 182.)

Rocky Mount.: \Yellowstone Nat. Park. No. 1539 als Ps. atro-

virens Dicks., die nach Kindberg wohl kaum in Nord-Amerika oder

nur in Grönland vorkommt.

P. falcicuspis wurde 1889 von Macoun am Lake Mara B. C. und

bei Revelstoke und Quesnel B. C. gesammelt.

Pylaisia pseudo-platygyrium Kindb. (Canad. Pl. S. 173.)

Kilborn, Wisc. No. 1669.

1884 am Lake Nipigon von Macoun gesammelt.

REN RR EEE’

68 Röll.

Camptothecium pinnatifidum Sull. et Lesqu.

Vancouver Isl.: Victoria. 105a als C. aureum (Lag.).

Brachythecium intricatum (Hedw.) Kindb.

Cascaden: Rigi am Clealum Lake bei Easton. 933 als Br.

erythrorhizon K. Müll. Mt. Hood, Oreg. 7000, No. 1119 als Br.

velutinum L.

var. declivum Kindb.

Capsula minore magis strangulata.

Cascaden: Kahchess Lake, Wash. No. 854 als Br. declivum (Mitt.).

Brachythecium pseudo-erythrorhizon Kindb. n. sp.

Aechnelt dem Eurh. (Brachythec.) erythrorhizon in der Tracht

durch die auch im feuchten Zustand sichelförmigen Blätter; stimmt

mit Brachyth. velutinum überein in den herablaufenden Blättern und

dem ganz rauhen Kapselstiel u. s. w.; weicht von ihm ab: Blätter

weniger locker gestellt, die der Aeste nicht viel schmäler, Eckzellen

zahlreich. Dagegen steht es dem Brach. intricatum näher, bei dem

aber die Blätter nicht herablaufend sind. Von beiden durch die

sichelföürmigen am Rand mehr oder weniger zurückgerollten Blätter

verschieden. Die Astblätter besitzen ein langes, fädiges Spitzchen;

die Stengelblätter sind deutlicher gesägt.

Cascaden: Mt. Hood, Oreg. 7000. No. 1113 als Brach. velu-

tinum (L.).

Brachythecium velutinum (L.) pedicello parum muricato.

Cascaden: Clealum Lake, Wash. No. 938 ist nach Kindberg

vermuthlich ein neues Eurhynchium,

Brachythecium digastrum C. M. et Kindb. (Canadian

Pl. S. 190.)

Argyle bei Chicago, Ill. No. 1862 als Br. laetum (Brid.) 1889

bei Ottawa, Ont. von Macoun und bei Canaan Forks N. B. von

Moser gesammelt.

Brachythecium acuminatum (Pal.) subsp. stenocarpum

(Ren. et Card.) Kindb.

Princeton, Wisc. Unter No. 1660 als forma stenocarpa, pedi-

cello longiore, capsula cylindrica angustiore,

Scleropodium (Eurhynch.) Macounii Kdbg. Rev. bryolog.

Vancouver Isl.: Victoria. No. 130 als Scleropod. caespitosum

(Wils.) f£ Auch von Macoun daselbst gefunden.

Isothecium spiculiferum Mitt,

Cascaden: Weston, Wash. 508 als Isoth. myosur. L. var.

stoloniferum Mitt.

Nachtrag z. d. i.d. Hedwigia (Bd. NNXII 1895) erschienenen Arbeit etc. 69

Isothec. obtusatulum Kindb. sp. n.

Revue bryol. 1895, lıvr. 6.

Vancouver Isl.: Victoria. No. 117 als Isoth. myosur. var. stoloni-

ferum Mitt.

lsothec. aplocladum Mitt.

Cascaden : Mt. Hood, Or. 1122 als Isoth. myosur. var. stoloni-

ferum Mitt.

Eurhynchium Sullivantiı Spruce.

Victoria, Vancouver Isl.

Mit Hypnum polygamum Sch. unter No. 133a.

Eurh. substrigosum Kindb. (Canadian Pl. 5. 205.)

Cascaden: Kahchess l.ake bei Kaston, Wash. No. 856 als Eurh.

strigosum (Hoffm.) 1889 auch von Macoun am Lake Mara bei Sicamous

B. C. gesammelt.

Thamnium Leibergii Britt.

Cascaden: Easton, Wash. No. 732 unter Thamn. neckeroides

(Hook).

Renauld und Cardot erkennen in ihren Observations 1894 diese

Art an und glauben, dass Th. neckeroides Hook. in Amerika nicht

vorkommt.

Amblystegium Sprucei BD. S.

Princeton, Wisc. No. 1684a mit Amblysteg. riparıum (L.) und

Hypn. bergenense (Aust.).

Amblysteg. serpens (l....

Yellowstone Nat. Park. 1550 als A. Schlotthaueri Ren. et Card.

Amblysteg. varıum Jur.

Chicago, Ill. No. 1901 als Ambl. serpens?

Amblysteg. subeompactum €. M. et Kindb. (Canad. Pl,

SEAN

Rocky M.: Deer Lodge, Mont. No. 1393 unter A. compactum CM.

Amblysteg. hygrophilum Sch. stellt Kindberg als Cam-

pylium (Sch.) hygrophilum Kindb. zu Hypnum.

Hypnum subimponens Lesqu.

Cascaden: Easton, Wash. No. 755. Rocky Mount.: Coeur

d’Alene, Id. No. 1230 als H. plumifer Mitt.

Hypnum subimponens Lesqu. var. cristula Kindb.

(Bull. Torr. Bot. Club, XVII. 280.)

Victoria, Vancouver Isl. No. 147. Cascaden, Enumclaw Wash.

No. 446 als Hypn. plumifer (Mitt.).

1887 von Macoun bei Victoria, Vanc., und bei Moodyville am

Burrard Inlet, B. C., gesammelt.

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70 Röll,

Limnobion montanum Wils.

Cascaden: Mt. Hood, Oregon, Gletscherbach. No. 1130—31 als

Limnob. ochraceum Turn, f. tenuis.

Von Macoun am Owen Sound, Ont., und von Waghorne in New-

foundland gesammelt.

Limnobion viridulum (Hartm.),

Cascaden: Mt. Hood, Oreg. 1122 unter L. molle Dicks. Neu für

das Festland von Nord-Amerika; in Grönland von Berggren gefunden.

2. Neubestimmungen von Herrn Renauld.

Hypnum aduncum Hedw.

Groupe typicum.

f. falcata Ren.

Rocky Mount: St. Ignatius bei Ravalli, Mont, No. 1332.

f, gracilescens (var. gracilescens Sch.).

Princeton, Wisc. No. 1675—76. Rocky Mount.: Deer Lodge,

Mont. No. 1418.

f. tenuis (var. tenue Sch.?).

Rocky M.: Yellowstone Nat. Park. No. 1557—-58; 1567. Cas-

caden: Enumclaw, Wash. No. 444, 445. Pend d’Oreille Lake, Idaho.

No. 1228 (forme avec degenerescence filescente des tiges), Princeton,

Wisc. No. 1686.

Groupe Kneiffii.

Hypnum aduncum Hedw. subsp. Kneiffii Boulay. Musc. fr. p. 60.

var. Kneiffii Sch.

Rocky Mount.: Deer Lodge, Mont. No. 1424.

var. pungens H. Müll.

Yellowstone Nat. Park, Wyom. No. 1547.

var. polycarpon Bland.

Rocky M.: Ravalli, Mont. No. 1335.

var. attenuatum Boul.

Rocky M.: Deer Lodge, Mont. No. 1417, 1420 exp.

var. intermedium Br. Eur.

Rocky Mount: Deer Lodge, Mont. No. 1426,

Cascaden: Ellensburg, Wash. No. 985.

Cette derniere, courte, trapue, ä feuilles assez serrees, simulant

Ambilyst. riparium.

var. Roellii var. n.

Tige dressee, peu rameuse ou divisee en branches fastigices,

long. 4—8 cent. F. espacdes, Etaldes, flexueuses, les apicales

lächement dressees ou subetaldes, longues de 2—3 mill,, oblongues,

Nachtraw z. d.i.d. Hedwigia (Bd. ANA 1595) erschienenen Arbeit etc. 7]

puis insensiblement et longuement acuminces-subulces, acumen

flexueux et tordu. Tissu plus ferme que d’habitude dans le H.

aduncum. Differe des formes precedentes par ses f. beaucoup plus

finement acuminedes et Nexueuses.

Rocky Mount: Yellowstone Nat. Park, Wyoming. No. 1577.

Groupe pseudofluitans Sanio.

(Hypnum aduncum v. lJaxum Sch.)

var. lexile Ren. var.n. Formes en partie emergeantes, plus greles.

Tige flexueuse. F. ordinairement plus ctroites, flexucuses ou legere-

ment homotropes, prolongees en subule tordue.

Victoria, Vancouver Isl. No. 144,

Indiana: Hobart, Calumet River No. 1912-13.

Hypnum Sendtneri Sch.

(H. aduncum & legitimum Sanio.)

Princeton, Wisc. No. 1700-1709.

Hypnum Iycopodioides Schwg.

(H. aduncum ®. molle et Wilsoni Sanıo.)

Subsp. H. Wilsoni Sch. mst.

(H. Sendtneri v. Wilsoni Sch.)

var. occidentale Ren. et Card. v. n.

Plante d’un vert france ou un peu jaunätre, voisine de la var.

americanum Ren. En differe par son port plus trapu, ses tiges

plus courtes (6—10 cm), divisees en branches simples ou munies

de rameaux tres courts subpennes et dmettant de la base des jets

orcles, surtout par ses feuilles A peine ou non plissces, non bosselces,

plus etroites, plus longuement rötrecies, plus arrondies et plus Etroites

Ala base (9), plus distinctement dceeurrentes et par les oreillettes

(10, 11) composees de cellules plus ctroites et plus allongees, a

parvis minces ou peu Epaissies, s’e&tendant souvent, presque jusqu A

la nervure au lieu d’occuper seulement l’angle extreme comme dans

la var. americanum. Les cellules basilaires pres de la nervure

ont les parvis, tantöt distinetement, tantöt tres peu Epaissies, peu

interrompues; les saillees apicales des cellules suprabasilaires sont

comme dans les H. Iycopodioides et H. Wilsoni tres visibles

quoique moins prononcees que dans la plupart des Microthamnium

et autres genres exotiques.

Rocky Mount: Deer Lodge, Mont. No, 1430, 1431, Idaho, lac

Pend d’Oreille, Sand Point. No. 1242. — Cette derniere plante un

‘peu plus grele que celle du Montana, plus rapprochee du H. adun-

cum, mais toutetois avec le tissu de la var. occidentale. Ces

plantes representent probablement une forme occidentale de la var.

americanum.

ir;

gr 43 Keks

72 Röll.

Hypnum capillifolium Warnst.

(H. aduncum v. Schimperi Sanio.)

var. Lindbergii Sanio.

Victoria, Vanc. Isl. No. 146. Cascaden: Roslyn, Wash. No, 760,

767, 768. Idaho: Pend d’Oreille Lake. No. 1242.

Hypnum uncinatum Hedw.

Cascaden, Easton, Wash. No. 752, 765. Rocky M.: Yellowstone

Nat. Park, Wyom. No. 1574.

f. plumosa (var. plumosum Sch.).

Rocky M.: Yellowstone Park. No. 1574.

var. plumulosum Sch. (subsp. H. symmetricum Ren. et Card.).

Victoria, Vancouver Isl. No. 147a, 148. Oregon: Astoria No. 312,

Cascaden: Kitchelos Lake bei Easton, Wash. No. 86467. Rocky

Mount.: Ravalli, Mont. No. 1330.

Hypnum fluitans L.

Groupe exannulatum.

(H. fluitans v. exannulatum Ren. H. exannulatum Guemb.)

Sous-groupe Rotae (H. Rotae De Not., H. exannulatum v. Rotae

Sch., H. fluitans v. stenophyllum Wils.).

var, falcifolium Ren. v. n. — Ördinairement purpurescente ou

melangee de vert ou de brun. Tige de 5-10 cent. ou parfois allongee,

pennee. F. foliiformes (4, 5), un peu espacces, lanceolees, retrecies

en une longue subule souvent rouldee en spirale et munie de

dents &cartdes. Nervure large de 0,08 0,09 mill. ä la base, pro-

longee tr&s avant dans l’acumen, noyce, dans la subule ou atteignant

le sommet mais non distinctement excurrente. Cellules moyennes

longues et etroites. Oreillettes du groupe, composces de cellules A

parvis ordinairement &paissies et colordes (4).

Rocky Mount: Yellowstone Nat. Park, Wyom. No. 1575. Taf. 111.

Fig. 5. In Renauld’s Extrait du Muscologia Gallica.

Bin 0 DEN Zu

Hepaticarum species novae IX.

Von F. Stephani.

Colurolejeunea, Spr.

GA Star 20:

Monoica, mediocris, in foliis longe lateque dilatata, in sicco

fuscescens. Caulis usque ad 3 cm longus, vage multiramosus.

Folia dissita, ex angusta basi ovato-falcata i. e. margine antıco

maxime-fere semi circulariter - curvato, remote angulatim-dentato,

postico minus arcuato, usque ad apicem anguste recurvo, apice IPso

acuto, decurvo et verus basin plantae spectante. Cellulae e margini-

nales 17 u, med. 25 u, basales 25X 70 u, angulis medioque parietum

nodulose incrassatae. Amphig. gracillima, usque ad basin fere bifida,

laciniis setaceis parum divaricatis. Perianthia pseudolateralia,

ubique alte papillata, inferne inflato-triquetra, in medio constricta,

superne ampliata profundeque triplicata, fere conduplicatim trıalata,

plicis in apice recte truncatis in dentem acutum abeuntibus. Folia

flor. minuta, perianthio triplo breviora eoque appressa, anguste ligulata.

Amph. floor. caulinis simile. Androecia parva, cauligena, bracteis

confertis tri-vel quadrijugis, cucullatis, diandris.

Hab. Insula Mindanao. (Micholitz, in folio vivo. Arum sp.)

Obwohl die Zahl der bekannten Arten unserer Gattung eine

geringe ist, so besitzen wir doch in diesen eine schöne Reihe Blatt-

formen, welche auf die Entwicklung der schlauchförmigen Blattspitze

Licht werfen. Am niedrigsten steht in dieser Hinsicht die vorstehend

beschriebene. Ari, deren ventraler Blattrand nur umgebogen ist undin

eine ganz offene Spitze ausläuft. C. paradoxa hat die Blätter schon

schr zusammengebogen, die Ränder des kahnförmigen Blattes schlagen

übereinander, sind aber noch frei und die Blattspitze ist gestutzt

und dütenförmig offen. C. tortifolia trägt bereits eine schlauch-

förmige geschlossene Blattspitze, doch sind auch hier die Theile noch

unverwachsen und lassen sich zurückrollen; ähnlich ist es bei C.

acroloba. — C. digitalis zeigt die Spitze bereits verwachsen,

pantoffelförmig und nach der Figur zu urtheilen ohne inneren re

verschluss, der als höchste Ausbildung den übrigen Arten eigen ist.

Die gesammten Verhältnisse liegen sehr ähnlich wie bei Physiotium,

wo wir eine ähnliche Stufenleiter finden und zwar nicht nur von

Art zu Art, sondern bisweilen an ein und demselben Stengel.

u ee A Kr a ui nie Fu

Bi: sul et a... de ui

74 F. Stephani.

Dergleichen Verwachsungen finden sich vielfach bei den Leber-

moosen (Micropterygium, Gottschea, Anthoceros), besonders auch in

den Perianthien vieler Gattungen, wo zugleich die Theilungsfähigkeit

der Zellen sich wuchernd fortsetzt und freie Lamellen gebildet werden.

Durch einseitiges Wachsthum der Blattfläche werden Kappen und

schlauchförmige Organe gebildet; sehr schön zeigen das die Blätter

einiger antarctischen Chiloscyphus-Arten und so ist jedenfalls auch

die Schlauchbildung bei Colurolejeunea entstanden.

C. Junghuhniana. St. n. sp. Monoica, minor. Caulis

parum ramosus, procumbens. Folia conferta, assurgentia, ex angusta

basi ligulata, margine antico ampliato, plano, postico involuto, apice

in utriculum magnum (", folii longitud.) cucullatum et abrupte

apiculatum excurrente. Cellulae ubique papuloso - prominulae.

Amph. magna, usque ad basin fere bifida, laciniis lanceolatis acutis.

Perianthia pseudolateralia, e basi stipitata campanulata, apice

truncata, tricornuta, cornubus brevibus subhorizontalibus vel curvatim

adscendentibus; folia floralia destructa. Androecia ad basin

ramulorum, bsacteis dissitis, ovatis, valde concavis, diandris.

Hab. Java (Junghuhn, sub nomine Lejeunea ceratophora

No. 6873 in Herb. Lindenbergii Mus. Vindob. asservata).

C. Karstenii. Goebel. Dioica? major, flavescens, robusta,

flaccida, prostrata. Caulis 2-3 cm longus, parum ramosus. Folia

conferta, assurgenti-secunda, ex angusta basi ovato-oblonga, inferne

navicularia i. e. margine antico anguste incurvo, postico late involuto,

superne in utriculum obtusum breve (vix '/, folii longitud.) abeunte.

Cuticula laevis, in apice utriculi tamen conico-papulosa. Cellulae

apicales 34 ı reliquae parum longiores, omnes in angulis medioque

parietum grosse nodulose incrassatae,. Amph. profunde bifida,

laciniis divaricatis, e basi triangulari radicellifera lanceolatis, longe

attenuatis apice subulatis Reliqua desunt.

Hab. Amboina in Monte Wawani Hila (Dr. G. Karsten).

Diese Pflanze führt Schiffner (Nova Acta Acad. Leop.-Carol.

Vol. 60. pag. 243) als C. superba Mont. auf. Prof. Goebel hatte

die Güte, mir einen Theil seines Exemplars zu überlassen und

machte mich darauf aufmerksam, dass die Pflanze mit C. superba

nicht identisch sein könne. In der Bearbeitung der Gazellen

Hepaticae führt Schiffner eine Anzahl Arten von Colurolejeunea auf,

darunter auch C. superba, deren Original ich gesehen und ge-

zeichnet habe; es unterliegt keinem Zweifel, dass diese Pflanze mit

der von Amboina leg. Karsten nicht identisch ist; im Uebrigen wurde

das Original der C. superba. Mont. in Tahiti gesammelt; die Pflanze

hat die freien Blattränder scharf gezähnt; was Schiffner nach Gottsche’s

Zeichnungen als Formen dieser Art |. c. anführt, gehört schwerlich dazu.

Hepaticarum species novae IX. 75

Die Autoren der Synopsis nahmen eine unglaubliche Verbreitungs-

möglichkeit an, was der ärgste Krebsschaden der Synopsis ist, für

welche die Florengebiete sich treppenförmig nach Parallelkreisen

gruppirten,; so hat auch Gottsche, wie aus seinem Herbarium hervor-

gehlt, sich von diesen alten Anschauungen nicht freimachen können.

Crossotolejeunea. Spruce.

C. cristulata. St. n. sp. Monoica, parva, tenella, pallida,

corticola inter muscos. Caulis 2-3 cm longus, tenuis, vage multi-

ramosus. Folia imbricata, subrecte patula, late ovata, obtusa, in-

tegerrima. Cellulae apicales 17 « med. 25 u basales vix majores,

trigonis minutis. Lobulus parvus, saccatus, carina itaque valde

arcuata, sinu profundo in folium excurrente, apice oblique truncatus,

angulo acuto. Amph. parva, dissita, caule vix latiora, transverse

inserta, integerrima, ferc orbiculata, ad medium bifida, sinu obtuso,

lobis latis obtusis. Perianthia pseudolateralia, anguste pyriformia,

apice truncata, brevirostrata, inferne teretia, tertio supero quinque

plicata, plicis ventralibus late divergentibus, omnibus irregulariter

eroso-dentatis vel swblaceratis. Folia flor. caulinis multoties

minora, perianthio duplo breviora, late ligulata, lobulo duplo bre-

viore, longe accreto, angusto, acuto. Amph. flor. foliis suis aequi-

longum, ligulatum, ad '/;, bifidum, lobis latis obtusis. Androecia

minima, bracteis bijugis.

Hab. Rio Janeiro (Glaziou).

Cum C. intricata. Jack et St. comparanda.

C. curvifolia. St.n. sp. Sterilis, fuscescens, foliicola, mediocris.

Caulis capillaris, multiramosus, ramulis divaricatis in folio repens.

Folia imbricata, apicibus liberis, oblique patula, ovato-falcata, obtusa,

versus apicem eroso-dentata, subplana. Cellulae apicales 8 u medio

17 «, basi 25 u, trigonis nullis. Lobulus minimus, cauli aequilatus

plicaeformis, subplanus, quadratus, apice recte truncatus, angulo

obtuso. Amph. dissita, pro planta magna, exciso inserta, e basi

cuneatim angustata late ovata, ultra medium bifida, sinu subrecto,

obtuso, laciniis itaque leniter divaricatis, oblongis, acuminatis, extus

grosse breviterque bidentatis. Reliqua desunt.

Hab. Insula Mindanao. (Micholitz).

Obgleich die Pflanze steril ist, habe ich sie doch von der

Publication nicht ausschliessen wollen, da sie an ihren vegetativen

Organen so leicht zu erkennen ist.

C. grossiretis. St.n.sp. Monoica, pallide-lavicans, mediocris,

dense depresso caespitosa. Caulis 1-2 cm longus, dense pinnatus,

pinnulis inaequilongis, recte patentibus. Folia ovata, apice rotundata,

concava, subrecte a caule patentia, dense imbricata, margine postico

76 F. Stephani.

strictissimo. Cellulae magnae, marginales 25 «, reliquae 35 u,

trigonis parvis, hyalinis, acutis. Lobulus parvus, cauli aequilatus,

turgidissimus, fere globosus, apice obtuso vix visibili, oblique in

folium attenuatus. Amph. parva, cauli parum latiora, subreniformia,

fere duplo latiora quam longa, ad medium bifida, sinu obtuso, laciniis

latis obtusis. Perianthia in ramulo brevi lateralia, parva, obovata,

longissime rostrata, superne 5 angularia, carinis grosse dentatis, fere

spinosis, posticis divaricatis. Folia flor. caulinis minora, inaequi-

magna, ovata, lobulo parvo triangulari vel lanceolato; amph. flor.

foliis suis parum minus, anguste ovatum, apice rima brevi angusta

bifidum, laciniis lanceolatis acutis. Androecia parva, cauligena,

bracteis densissimis 3—4 jugis.

Hab. Brasilia, Petropolis (Rudolph. Herb. Mus. Berol.).

Proxima C. paucispinae Spruce.

C. paucidentata. St. n.sp. Monoica, parva, tenella, pallida,

muscicola. Caulis 1—2 cm. longus, pauciramosus, capillarıs. Folia

contigua, subrecte patula, ovato-falcata, acuta vel breviter acuminata,

margine (praesertim versus apicem valde “irregulariter obtuseque

denticulata. Cellulae 17 a, medio 25 u, basi 25 X 34 u, trigonis

nullis. Lobulus saccatus, carina itaque arcuata, abrupte in folii

marginem transeunte, ceterum inflato, apice valde angustato, cum

plica elongata in folium excurrens. Amph. parva, caule parum

latiora, transverse inserta, fere orbiculata, ultra medium bifida, sinu

angusto acuto, lobis latis acutis. Perianthia pseudolateralia, anguste

pyriformia, apice rotundata brevirostrata, profunde 5 plicata, plicis

irregulariter dentatis, posticis parum divaricatis longeque decurrentibus.

Folia flor. perianthio duplo breviora, subaequaliter biloba, lobis

longe coalitis, antico duplo latiore, grosse paucidentato, postico sub-

integerrimo. Amph. flor. foliis suis aequimagnum ad '/; bifidum,

paucidentatum, uno latere coalitım. Androecia parva, cauligena,

bracteis bijugis.

Hab. Cuba; in Mte. Verde. (Wright).

C. paucispina Spruce differt perianthiis compressis apice

obcordatis.

C. torticuspis Spruce delenda est. Syn.: Strepsilejeunea

involuta G.

Dicranolejeunea. Spruce.

D. acutifolia. St. n. sp. Dioica, pusilla, pallide-virens,

caespitans, corticola. Caulis 10-15 mm longus, flaccidus, multira-

mosus, ramulis remote breviterque pinnulatis, microphyllis. Folia

parum imbricata, oblique patula, ovata, apice late acuminata, acuta,

integerrima, subplana. Cell. 17x25 «, basi parum longiores, parietibus

subaequaliter incrassatis. Lobulus magnus, folio duplo brevior,

Hepaticarum species novae IN. 77

oblongus, 3 plo longior quam latus, carina substricta, levi sinu in

folium excurrens, apice oblique truncatus, acutangulus sub apice

constrietus. Amph. magna, caule 5 plo latiora, exciso inserta, ovato-

rotundata, ad '!, vel fere ad ", bifida, sinu angusto obtuso, laciniis

late acuminatis acutis. Flores « semper fere pseudolaterales,

rarissime in dichotomia; folia flor. caulinis similia, lobulo subaequi-

longo, longe soluto, ex angusta basi ovato-oblongo, acuminato,

obtuso. Amph. flor. ovatum apice ad !, excisum, lobis triangularibus

acutis. Androecia ignota.

Hab. Peruvia (Herb. Lindenberg 6890, in Museo, Vindob.).

Eine sehr interessante Pflanze, nach Farbe, Schlaffheit, Zellbau,

Form des Lobulus und Blattes durchaus zu Dicranolejeunea

gehörig, abweichend nur durch 2 spitzige Amphig. und durch die

fast ausnahmslos unilaterale Stellung der © Blüthe.

D. Didericiana. St. n. sp. Dioica? Major, flavicans, frustula

solum visa. Folia conferta, parum oblique patula, late falcato-ovata,

apice rotundata, mucronata vel minute denticulata. Cellulae

margin. 12 «, medio 17 u, basales 25 34 “, trigonis magnis, ad basin

folii trabeculatim elongatis. Lobulus oblongus, folio triplo brevior,

inflatus, carina arcuata sinu amplo in folium transeunte, apice trun-

catus in folii marginem anguste recurvum excurrens. Am ph. parva,

caule triplo latiora, transverse inserta, e basi cuneatim angustata,

fere rotunda apice leniter truncata, angulata, angulis rarius in denti-

cula mutatis. Perianthia compresso-pyriformia, ventre bicarinata,

carinis interrupte alato-cristatis. irregulariter inciso-lobulatis. Folia

flor. perianthio duplo breviora, ovato falcata, acuta, versus apicem

denticulata, lobulo triplo breviore, ad medium soluto, lanceolato

acuminato. Amphig. florale late spathulatum foliis suis majus

apice denticulatum. Androecia ignota.

Hab. Ins. sandvicensis Owahu (Didrichsen). Optime distincta

perianthio postice bicarinato et lobulis magnis acutis foliorum floralium.

D. gilva. St. n. sp. Dioica? parva, rufescens. Caulis 1-2 cm

longus, parum ramosus, sub flore furcatus. Folia conferta, oblique

a caule patula, suplana, late ovata, acuta vel oblique truncato-bidentula,

Cellulae apice 17 «, medio 17X25 4, basi 25%X45 u, trigonis parvis

acutis. Lobulus folio subtriplo brevior, oblongo-rectangulatus,

carina leniter arcuata, apice recte truncatus, angulo acuto. Amph.

caule fere quadruplo latiora, exciso inserta subcircularia. Perianthia

in angulo furcarum, compresso-obconica, superne late alata, alis grosse

longeque spinosis fere ut in perianthiis Lopholejeunearum.

Folia flor. parva, perianthio fere duplo breviora, oblique ovata,

acuta, lobulo minimo plicaeformi. Amphig. florale late obovatum,

apice rotundatum. Androecia ignota.

ne Ra ae na ig Ri ae 33 2 ad a Aral nr Bean 2 naeh En N a u 1

F. Stephani.

Hab. India orient. Darjiling. (Wichura). Perianthio maxime

spinoso distinguenda.

D. Renauldii. St. n. sp. Monoica, fulva, muscicola,

mediocris. Caulis 1—1', cm longus, paucis pinnulis instructus,

superne sub flore furcatus vel persaepe simpliciter tantum innovatus.

Folia subrecte patula, conferta, late ovata, mucronata, sub apice

pro more bi-tri denticulata. Cellulae apice 17 u, medio 17X25 u,

basi 25%X35 u, incrassatio angulosa et mediana minima. Lobulus

folio vix duplo brevior, ovato oblongus, turgidus, carina leniter arcuata,

vel convolutus et longe in folium excurrens vel magis evolutus et

oblique truncato-attenuatus, angulo abtuso. Amph. magna, folio vix

duplo minora, imbricata, profunde exciso-inserta, alis accretis, fere

circularia vel reniformi-rotunda, cauli appressa, margine ubique arcte

recurva. Perianthia terminalia, utroque vel uno latere innovata,

compresso-obovata, ventre alte carinata, carina haud armata sub

apice evanida, marginibus plus minus late alatis, alis superne grosse

remoteque spinosis laceratisque. Folia floralia caulinis duplo

minora, ovato-oblonga, apice 3—4 spinosa, spina media multo majore.

Amph. flor. spathulatum, foliis suis majus, altecarinatum. Androccia

majuscula, bracteis quinquejugis, parvis, laxe dispositis, saccato-erectis

acuminatis, lobulo plicaeformi, inflato attenuato.

Hab. Ecuador (Herb. Renauld).

Foliorum caulinorum lobulo magno facile dignoscenda,

D. saccata. St. n. sp. Dioica, parva, fusca, muscicola.

Caulis 1—2 cm longus, pauciramosus. Folia conferta, e basi

grosse saccata erecta falcato-patula, valde concava, apice bi-vel

trispinosa, decurva. Cell. apice 17, medio 25, basi 25 X45 u, in-

crassatio angulosa et mediana parva. Lobulus folio duplo brevior,

maxime saccatus, ad carinam turgidissimus, superne planus, folio

suo appressus, apice oblique lateque truncatus, angulo acuto, carına

semicircularis, sinu profundo subrecto in folium excurrens. Amphig.

parva, caule vix duplo latiora, obconica, superne truncato-rotundata.

Perianthia desunt. Folia flor. obovata, superne irregulariter

spinoso-dentata, lobulo minuto plicaeformi. Amph, florale e basi

angusta fere circulare apice subdentatum vel integrum. Androecia

ignota.

Hab. Cuba (Wright).

Cum D. cipaconea G. comparanda.

D. setacea. St.n. sp. Dioica, rufo flavicans, planta singula

in folio repens. Caulis 2 cm longus, sub flore simpliciter innovatus.

Folia oblique patula, basibus imbricata, in plano late ovato-falcata

(margine postico substricto, antico valde arcuato) apice breviter acu-

minata, acuta. Cellulae apice 17, reliquae 25 X 34 «, trigonis

Hepaticarum species novac IX, 79

parvis. Lobulus triplo brevior, ovato-oblongus, turgidus, convolutus

(in plano late ovatus apice angustatus recte truncatus, angulo acuto)

in foli marginem recurvum evanidus, carina leniter arcuata, levi

sinu in folium abeunte. Amph. transverse inserta, basi cuneatim

angustata ceterum fere circularia, caule 3plo latiora. Perianthia

desunt. Folia floralia caulinis multo minora, lanceolata, insetam

attenuata, lobulo parvo plicaeformi, oblongo-rectangulato. Amphig.

florale foliis suis duplo latius, obovatus. Androecia ignota.

Hab. Brasilia subtropica (Ule).

Obgleich die Pflanze steril ist, zweifle ich nicht, dass sie zur

Gattung Dicranolejeunca gehört, da sie die typischen kleinen

Involucralblätter mit rudimentärem Lobulus zeigt, dieselben lassen

die Pflanze von allen Verwandten sofort unterscheiden und habe

ich sie aus diesem Grunde hier angeschlossen und nicht wie so

manche andere schöne aber sterile Lejeunea zurückgestellt.

Zum Genus Dicranolejeunea gehören, so weit mir bekannt

ist, folgende 17 Arten, die man nach ihren Blättern in 2 Gruppen

trennen könnte.

1. Foliis semper integerrimis:

Dicr. acuminata, incongrua, loxensis, mexicana,

phyllorhiza, setacea.

2. Foliis plus minus valide dentatis:

Dicr. axillaris, cipaconea, ciliatıflora, circinnata,

Didericiana, dubiosa, gilva, hypoacantha, Jelskii, Re-

nauldii, saccata.

Zur Nomenclatur bemerke ich noch:

1. Dicranoleji Glaziovii Spruce ist identisch mit D. phyl-

lorhiza.

2. Lejeunea trigona Mont. gehört nicht zu Dicrano-

lejeunea, wie ich in Hedw. 1890 p. 20 und p. 136 angegeben

habe. Die ächte Pflanze ist eine Archilejeunea.

Diplasiolejeunea.

D. Rudolphiana. St.n. sp. Monoica, mediocris, virescens,

dense depresso caespitans. Caulis arcte repens, irregulariter multi-

ramosus. Folia conferta, recte a caule patula, late elliptica, breviter

inserta (semiamplexicaulia) antice caulem late superantia, valde

concava, apice rotundata. Cellulae apice 12 u trigonis parvis,

medio 25 X 25 « trigonis majusculis, basi 25 X 34 4 incrassatio

trabeculata. Lobulus maximus, totum fere marginem posticum

folii occupans, e basi angusta convoluta sensim ampliatus magisque

evolutus et applanatus, apice oblique truncatus, angulo spina longa,

stricta erecta caulique parallela instructus, carina leniter arcuata,

80 F. Stephani.,

levi sinu in folii marginem abeunte. Amphig. contigua transverse

inserta, lobis ligulatis obtusis recto angulo divergentibus. Perian-

thia pseudolateralia, compresso-pyriformia, 5plicata, plieis posticis

subparallelis, longe decurrentibus (ultra medium perianthii) omnibus

papuloso-asperulis, rostro magno. Folia floralia perianthio plus

duplo breviora, vaginatim amplectentia, subaequaliter biloba, lobis

profunde solutis, ligulatis obtusis. Amph. flor. foliis suis majus,

obovato-spathulatus, apice rima brevissima bilobulata. Androecia

magna, bracteis 4 jugis.

Hab. Brasilia, Petropolis (B. Rudolph 1890. Herb. Musei

Berolin.).

D. armatiloba. St. n. sp. (Lejeunea pellucida var. 9.

trispinosa Gottsche ms.) Folia imbricata, recte patentia, oblique

ovato-rotunda (margine antico valde arcuato, postico substricto).

Lobulus magnus, folio vix duplo brevior, obovatus, inflatus, caulem

versus valde angustatus, apice late truncatus ibidemque bis excisus,

excisuris profundis, aequimagnis, approximatis, appendiculo mediano

biciliato separatis, ciliis late divergentibus; in lobuli angulo supero

normali adest cilia tertia hamata. Amph. dissita, transverse inserta,

lobis ligulatis, obtusis, late divergentibus.

Hab. Guadeloupe (in folio).

Die Pflanze zeichnet sich durch einen höchst sonderbaren Lobulus

aus, der an der Spitze breit gestutzt ist und an der freien Ecke

einen hakenförmigen Dorn trägt; die andere Ecke verläuft in bekannter

Weise schmal ausgezogen in den Blattrand, zwischen diesen 2 Ecken,

also in der Mitte des abgestutzten Randes erhebt sich aus schmaler

Basis ein keilförmiges Mittelstück (appendiculum), das an der breiteren

Spitze abgestutzt ist und dessen beide Ecken je 1 Dorn tragen, die

vollständig divergiren, von denen also der eine dem hakenförmigen

Eckdorn zuneigt, der andere der schmalen in den Blattrand ver-

laufenden Falte. Der Lobulus scheint auf diese Weise am Rande

gleichsam 2 tiefe Ausschnitte zu tragen, die durch das betreffende

Mittelstück getrennt sind.

Drepanolejeunea. Spruce.

D. Araucariae. St. n. sp. Dioica, exigua, capillacea, hyalina,

in foliis corticeque gregarie crescens. Caulis 3—4 mm longus,

effuse ramosus. Folia dissita, e basi saccata, erecta, falcatim patula,

lanceolata, acuta, in medio marginis antici 3 dentibus approximatis

armata, ceterum integerrima. Cellulae marginales 12 «, reliquae

12X17 u; incrassatio nulla. Lobulus pro planta maximus, dimidium

folii superans, ovato saccatus (carina valde arcuata, papulosa) apice

angustato magno dente hamato armatus. Amph. anguste inserta,

Hepaticarum species novae IX. 81

e basi obcuneata in duas lacinias late divergentes excurrentia, laciniae

3 cellulis superpositis formata. Perianthia pseudolateralia, oblonga,

quinqueplicata, plicis adapicem paueispinosis, posticis longe angusteque

decurrentibus parallelis, rostro pro planta grosse tubuloso; folia

floralia parva, perianthio 3plo breviora, cum amphig. in excipulum

erecto-patulum alte coalita, profunde aequaliterque biloba, laciniis

acutis, utrogue margine quadrispinosis, apinis versus spicem sensim

minoribus; amph. florale foliis suis acquimagnum, simillimum.

Androecia ignota.

Hab. Brasilia. Serra Geral. (Ule n. 243 in foliis Araucariae).

D. Blumei. St. n. sp. Dioica, parva, in sicco fuscescens.

Caulis 10—15 mm longus, arcte repens, dense breviterque, pinnatim

ramosus, ramis microphyllis. Folia imbricata, subrecte patentia

(Juniora multo minora, assurgenti secunda) ex angusta basi oblique

obovata, apice rotundata vel obtusa, ubique grosse dentata, dentibus

remotis, brevibus, in margine postico saepe majoribus. Cellulae

marginales 17 «, medio 12X25 «, acute hexagonae, basi 17X25 u,

trigonis majusculis. Ocella 4-5 in folii disco dispersa. Lobulus

magnus, folio subduplo brevior, late linearis, carina in foliis adultis

striecta, recte in folium continua, apice oblique truncatus, angulo

obtuse dentato, dente pro more occulto. Per. ignota. Flores ©

pseudolaterales; folia floralia caulinis minora, ovata, acuminata,

superne plus minus grosse dentata, lobulo longe accreto, apice

grosse 2—3 dentato;, amph. flor. utroque latere lobulis suis alte

accretum, oblongum, ad ", bifidum lobis acuminatis paucidentatis.

Androecia ignota.

Hab. Java (Blume in Herb. Mus. Vindob. n. 6912). N.-Guinea.

Finschhafen Dr. ©. Warburg. Vide etiam Icones Schiffneri: Nova

Acta Acad. Caes. Leop. Vol. 60. p. 231. tab. 3.

D. clavicornis. St. n. sp. Dioica, pusilla, pallida, in foliis

repens vel aliis hepaticis consociata. Caulis capillaris, paucis ramulis

longis instructus. Folia parum imbricata, oblique patula, saepe fere

erecta, i. e cauli parallela, dorso longe soluta, ovata vel ovato oblonga,

valde concava, apice acuta decurva. Cellulae ubique 17 «, angulis

medioque distincte incrassatae, alte papulosae. Lobulus magnus,

folio vix duplo brevior, valde inflatus, carina valde arcuata, maxime

papulosa, sinu profundo in folium excurrente, sub apice constrictus,

ipso apice truncatus, angulatus. Amphig. parva, dissita, transverse

inserta, profunde lunatim excisa, lobis linearibus, obtusissimis, fere

truncato-rotundatis, ubique 2 cellulas latis. Perianthia pseudo-

lateralia, anguste pyriformia, ecarinata, apice angustato 4 cornuta,

cornubus parvis erectis clavatıs. Fol. flor. perianthio parum breviora,

lanceolata, acuta, apice irregulariter paucidenticulata, lobulo longe

Hedwigia Bad, NAAT, 1896, 6)

a la aan an er

89 F, Stephanı.

accreta, apice libero lanceolato vel spiniformi. Amph. flor. e basi

cuneatim angustata, obovata, ad ', biloba, lobis lanceolatis, obtusis,

paucidentatis. Androecia ignota.

Hab. Insula San Thome (Moller) Kamerun (Dusen 843).

Das Perianth von Drepanolejeunea ist meist an der Spitze

gestutzt und in 4 horizontale Spitzen ausgezogen, an unserer Pflanze

ist das Alles anders und sie ist daher eine sehr interessante Form

innerhalb ihrer Gattung.

D. dentata. St. n. sp. Exigua, hyalina, foliicola. Caulis

3-4 mm longus, remote longe ramosus, ramis late divaricatis ut in

Microlejeuneis. Folia dissita, e basi erecta falcatim patula, ovata,

subplana, breviter acuminata, margine cellulis conico-prominulis den-

tata. Cellulae ubique 17 «, basi parum longiores, incrassatio sub-

nulla. Lobulus magnus, folio suo duplo vel subtriplo minor, ovatus,

valde turgidus, sub apice constrictus, ipso apice excisus, dente

breviter digitiformi, recto, carina arcuata, sinu profundiore in folium

excurrens. Amph. parva, cauli aequilata, late ovata, apice angustata,

ad medium bifida, rima angusta, lobis acutis, subconniventibus.

Reliqua desunt.

Hab. Amboina, in monte Wawani Hila (Dr. G. Karsten).

Durch die breit eiförmigen Amphig. und deren nach der Spitze

zu verschmälerten, zusammenneigenden Lacinien sofort kenntlich.

D. Eggersiana. St. n. sp. Dioica, parva, in filicum fronde

repens, dilute viridis. Caulis 10—15 mm longus, vage pinnatim

ramosus. Folia contigua, oblique subrecte patula, ex angusta basi

late ovato-falcata, medio supero grosse spinosa, spinis sub 8, apicali

longiore, margine antico sub 5, postico sub 2. Cellulae marginales

17 u, relique 25X35 4, trigonis nullis. Lobulus magnus, inflatus,

late-ovatus, carina arcuata, sinu profundo in folium excurrens,

sub apice constrictus, ipso apice exciso truncatus, angulo obtuso.

Amph. minuta, cauli aequilata, transverse inserta, ad ?\, bifida, sinu

acuto, angusto, laciniis latis porrectis. Perianthia pseudolateralia,

oblonga, 5 plicata, plicis apice longe spinosis, spinae sub 5, aggregatae,

angustae. Folia flor. minima, perianthio 4 plo breviora, libera,

ut amphigastrium breviter biloba, lobis apiculatis obtusis; in foliis

flor. saepe adest lacinia antica tertia, minor, dentiformis. Androecia

ignota.

Hab. Cuba, in Monte Verde (Eggers No. 5188).

D. obliqua. St. n. sp. Dioica, parva, fusca, foliicola; caulis

—10 mm longus, divaricatim pauciramosus. Folia remota, erecta,

i. e. cauli parallela, dorso longe soluta caulique late incumbentia

vel caulem superantia, ibidemque ampliata et irregulariter dentata,

valde concava, apice longe acuminata, acumine hamatim decurvo.

Hepaticarum species novae IX. 83

Cellulae ubique 17 ı, vix incrassatae, in dorso foliorum alte pappillatac.

Lobulus magnus, ereetus, turgidus, ovatus vel oblongus, apice recte

truncatus, sub apice constrietus, carina armata valde papillosa.

Amph. optime cuneata i. e. basi angusta transverse inserta, lateribus

strictis, apice late lunatim excisa, lobis itaque divergentibus acumi-

natis acutis, haud papillata. Perianthia pseudolateralia, e basi

angusta valde inflata, apice late truncata, medio constricta, superne

quinque plicata, plicis latis, obtusis, apice inflatis, umbonatis sub-.

cornuta. Folia floralia caulinis majora, similia, lobulo duplo

breviore longe accreto, dentato. Amph. flor. lobis suis alte accretum,

late ovatum, lateribus dentatis, apice profunde lunatum, lobis acu-

minatis porrectis acutis. Androccia ignota.

Hab. Java, in Monte Salak. (Teysmann). Cum D. ternatensi

comparanda.

D. setistipa. St.n.sp. Dioica, parva, flavo-rufescens, folii-

cola. Caulis 1-2 cm longus, divaricatim multiramosus, ramis inferne

regulariter pinnatis, superne simplicibus. Folia contigua vel breviter

imbricata, oblique patula, margine antico recurva, apice tamen

hamatim decurva, in plano subcultriformia, e basi angusta sensim

ampliata, tertio supero late acuminata, acuta, grosse dentata. Cellulae

marg. 17 „", medio 1735, basi 1750 «. Ocella 4—5 in folii parte

superiore dispersa. Lobulus folio duplo brevior, turgidus, oblongo

subeylindricus, sub apice solum constrictus, plica brevi angulata in

folium excurrens. Amph. magna, transverse inscrta, laciniis anguste

cultriformibus, acutis, curvatim divergentibus. Perianthia pseudo-

lateralia, 5gono-obpyramidata, medio infero inflata, superne profunde

Splicata, plicis alaeformibus, triangulatis, recte patentibus, ut peri-

anthium apice late truncatum appareat. Folia floralia parva,

lanceolata, paucidentata, lobulo longe soluto, lincari, subaequimagno,

apice 2 vel 3 lacinulato. Amph. ligulatum, apice emarginato inaequa-

liter bidentatum, lobulis suis alte coalitum. Androecia ignota.

Hab. Java (Zollinger No. 3548, Dr. OÖ. Warburg, Dr. G. Karsten).

Vide etiam Icon. Schiffneri, Nova Acta Acad. Caes. Leop. Vol. 60.

p. 233. Tab. 3.

In den Herbarien habe ich diese Pflanze wiederholt als Lej.

inchoata gefunden, eine amerikanische Art, die ein Perianth mit kamm-

förmig eingeschnittenen und gezähnten, oft fast gewimperten Falten

besitzt. Synonym mit Lej. inchoata sind: Lej. planiuscula

Spruce und L. epitheta Taylor.

D. subulata. St.n.sp. Sterilis, parva, pallida, foliicola. Caulis

4-6 mm longus, paucis ramulis longis instructus. Folia dissita,

oblique patula vel suberecta, e basi angusta oblonga, apice in acumen

longum abrupte subulatum attenuata. Cellulae 17 #, trigonis

id a inc 2 a a u nn rt

Mr Ei en Ze u

a Si astäie. = en u alt En nn Bu ze Zu

34 F, Stephani.

magnis, margine hic illic conico prominulae, dentes rudimentarios

fingentes. Lobulus magnus, saccatus, ovatus vel oblongus, apice

angustato truncatus, angulo obtuso, carina valde arcuata, papulosa,

levi sinu in folium excurrens,. Amphig. minima, cauli aequilata,

disco 2 cellulas alto, laciniis brevibus porrectis, 3 cellulis superpositis

sistentibus. Reliqua desunt.

Hab. Portorico, in Plagiochilam repens (Schwanecke).

D. tenuis differt foliis apice solum lanceolatis, haud setaceis,

D. lancifolia G. amph. obcuneatis foliisque acuminatis, obtusis,

D. Leiboldiana G. foliis ovatis, acutis, amph. magnis etc. etc.

D. Teysmannii. St. n. sp. Dioica, tenuis, muscis consociata,

flavo-virens. Caulis 1—2 cm longus vage ramosus, ramis longis,

simplieibus. Folia dissita, erecta, apice inflexa vel divergentia e basi

saccata triquetra, margine antico cum angulo subdentiformi cauli in

cumbente, apice in acumen longum angustum attenuata, ubique

grosse alteque papillosa. Lobulus pro planta maximus, valde in

Natus, saccatus, curvatim erectus, sub apice constrictus, apice angusto

truncato-rotundatus. Amph. parva, obcuneata, transverse inserta,

usque ad limbum unicellulare profunde lunatim-excisum, laciniis

sensim attenuatis, parum divergentibus, superne setaceis, nusquam

papillosis. Perianthia ignota; flores © pseudolaterales; folia flor.

rhombea, longe acuminata, utroque latere ciliato-spinosa, lobulo

subaequilongo 3-4 spinoso. Amph. flor. folüs suis aequilongum,

ad ', anguste exeisum, utroque latere grosse 3 spinosum, cum foliis

in excipulum pyriforme, perianthii formam maxime simulantem,

connata; hoc involucrum ceterum ubique valde papillosum est et

dentibus et laciniis marginalibus supra descriptis maxime armatum.

Androecia ignota.

Hab. Banca. leg. Teysmann. Sumatra (Herb. Lindenberg

No. 6357 in Herb. Musei Vindob.).

D. tricuspidata. St. n. sp. Dioica, parva, flavescens, in

foliis stellatim expansa. Caulis 10-15 mm longus, divaricatim

longe ramosus. Folia dissita, oblique patula, basi obcuneata, medio

supero in 3 lacinias dissoluta, lacinia media utroque latere dentata,

reliquae duae oppositae, divergentes; in margine antico, ceterum saepe

recurvo, pro more adest lacinia altera versus basin folii. Cellulae

ubique 12 X 17 u, subaequaliter incrassatae. Lobulus ovatus vel

oblongus, turgidus, parum arcuatus, apice excisus vel truncatus, sub

apice constrictus. Amph. majuscula, disco transverse-oblongo,

i. e. subtriplo latiore quam longo, utroque latere seta bicellulari

coronato. Perianthia ignota. Flores fem. pseudolaterales; folia

flor. obovata, ad medium subaequaliter biloba, lobis ubique grosse

ie a a .

Hepaticarum species novae IN. 85

irregulariterque dentatis. Amph. flor. foliis suis alte coalitum ad

!/; bifidum, ubique grosse irregulariterque dentatum, fere lobulatum.

Androecia ignota.

Hab. Insula Benguet. (Philippinae) (Micholitz).

Cum D. tridactyla comparanda.

D. trigonophylla. St. n. sp. Monoica, pusilla, in foliis et

hepaticis repens. lFolia imbricata, suberecta, lanceolata, acuta,

marginibus repandis vel angulatis, postico pro more integro, antico

inlerdum grosse angulato, vel spina longa recte patente munita.

Cellulae 17 « trigonis m-gnis. Lobulus magnus, folio vix duplo

brevior oblongus, semi erectus, carina leniter arcuata, apice oblique

truncatus in folıı marginem attenuatus, sub apice constrictus. Amph.

parva, cauli aequilata, cuncata, superne lunatim excisa, laciniis parum

divaricatis, lateribus folii recte continuis. Perianthia pseudo-

lateralia, juniora clavata, adulta turbinata, quinqueplicata, plicis parum

decurrentibus, cristato-ciliatis. Involucrum e basi angusta alteque

connata, perianthio appressum. Folia flor. lanceolata, parvilobulata,

parum dentata. Amph. flor. simile, apice bifidum. Androecia

parva, in ramulis lateralia, bracteis 4 jugis.

Hab. Guadeloupe (l’Herminier) Martinique (Duss).

Eulejeunea. Spruce.

E. azorica. St. n. sp, Monoica, dilute viridis, mediocris,

laxe caespitans, muscicola. Caulis 15-20 mm longus, parum

ramosus. Folia imbricata, oblique patula, ovato-rotundata, apice

interdum subtruncata, concava. Cell. 12 «, medio 17, basi 17X25 u

trigonis subnullis. IL.obulus major, folio triplo brevior, oblongus,

parum inflatus, carina leniter arcuata, sinu amplo in folium excurrens,

apice vix angustato oblique truncatus, angulo obtuso. Amph.

dissita, majuscula, caule duplo latiora, transverse inserta, ad ?, bifida,

sinu angusto, obtuso, lobis vix divaricatis, ligulatis, obtusis vel

lanceolatis acutis. Perianthia pseudolateralia, compresso-pyriformia,

apice rotundata, longius rostrata, 5 plicata, plicis ad carinam papulosis,

posticis usque ad basin fere decurrentibus. Fol. flor. caulinis

multoties minora, perianthio triplo breviora, anguste ovata, obtusa,

lobulo parvo, lanceolato, longe soluto. Amph. flor. obovato-oblongum,

lobulis utroque latere coalitum, ad ", bifidum, sinu acuto, lobis

triangulatis acutis. Androecia parva, cauligena, globosa, bracteis

paucijugis.

Hab. Azorae Insulae. (Pico de Carvai) Herb. Musei Coimbra.

E. Breutelii. St. n. sp. Dioica, pusilla, flavicans, caespitosa,

corticola. Caulis 12—15 mm longus, vage ramosus. Folia parum

imbricata, oblique patula, ovata, obtusa vel rotundata, valde pellucido,

86 F. Stephani.

pro plantae magnitudine grosse cellulosa. Cellulae apice 12,

medio 20, basi 17X35 « trigonis magnis acutis. Lobulus

ovatus, inflatus, carina itaque valde arcuata, sinu amplo excurrens,

sub apice constrictus, apice ipso valde angustatus, excisus breviden-

tatus, plica angusta longiore desinens. Amph. majuscula, remota,

transverse inserta, cordiformia, ad ', biloba, rima angusta, lobis

latis obtusis. Perianthia desunt. Flores fem. pseudolaterales;

folia flor. caulinis minora, similia, lobulo magno parum soluto,

oblongo, obtuso, altero multo minore plicaeformi. Amphigastr.

flor. foliis suis multo majus, folio caulino aequimagnum, utroque

latere lobulis suis coalitum, late obovatum, ad ', bifidum, lobis

acutis, sinu acuto. Androecia ignota.

Hab. Promont. bonae spei. Kookebosch (Breutel) sub nomine

Lej. caespitosa Ldbg. in herbariis asservata; haec differt lobulis

3 plo fere longioribus quam latis, acuminatis et foliorum cellulis ad

angulos haud incrassatis etc. etc.

E. caviloba. St.n. sp. Dioica, minuta, subhyalina, muscicola.

Caulis 6-8 mm longus, vage longe ramosus. Folia contigua,

oblique patula, late ovata, apice rotundata, valde concava. Cell. 12 u

reliquae 12 X 25 «, trigonis nullis. Lobulus folio triplo brevior,

late ovatus, maxime inflatus, carina itaque valde arcuata, sinu pro-

fundo in folium excurrente, apice valde angustatus, oblique excisus,

angulo dentiformi. Amph. minuta, cauli aequilata, transverse inserta,

circumscriptione fere rotunda, ad ", late lunatim excisa, laciniis

triangulatis acuminatis, porrectis vel leniter conniventibus. Cellulae

solum 8 «. Perianthia pseudolateralia, pro planta magna, oblonga,

parum compressa, duplo longiora quam lata, apice truncato rotundata,

plicis posticis longe decurrentibus, parallelis, humilibus, rostro

majusculo. Folia flor. caulinis multoties minora anguste elliptica,

obtusa, lobulo vix duplo breviore lanceolato, ad medium soluto.

Amph. flor. obovatum ad !/; bifidum, rima angusta, lobis acutis.

Androecia ignota.

Hab. Java (Paterson). Herb. Brotherus.

E. cladobola. Spruce (emend.).

Monoica. Perianthia pseudolateralia, parum exserta, foliis

caulinis parum longiora, clavato-pyriformia, apice vix plicata, longe

rostrata,; folia flor. caulinis minora, anguste ligulata lobis magnis,

anguste-triangulatis, longe solutis, obtusis. Amph. flor. perianthio

duplo brevius, late ovatum, vix ad medium bifidum, rima angusta,

lobis acutis. Androecia parva, cauligena, globosa, bracteis 2—3 jugis,

inflato conduplicatis, apice breviter bilobis, lobis aequimagnis, acutis.

Hab. Peruvia. Manabi 2000‘ (G. Wallis 1876) in Plagiochila

repens.

Hepaticarum species novae IX. 87

Planta a Spruceo descripta minor est, etiolata, deinde sterilis,

ceterum foliis, amphigastriis cellulisque haud diversa.

E. conceptionis. St. n. sp. Monoica, parva, flavescens.

Caulis vage multiramosus, 10—12 mm longus. Folia contigua

vel parum imbricata, late ovata, subrhombea, optime falcata i. e.

margine antico valde arcuato, postico substricto, apice obtusa. Cell.

ap. 12, med. 17, basi 17 X 25 # trigonis distinctis. Lobulus parvus,

parum inflatus, rectangulatus, apice recte truncatus, angulo acuto.

Amphig. parva caule 2plo latiora, basi cuncata, transverse inserta,

ultra medium bifida, lobis leniter divaricatis, lanceolatis, acutis.

Perianthia pseudolateralia, compresso angustoque obconica, apice

late emarginata, longe rostrata, alis rotundatis, Splicata, plicis posticis

brevibus late divergentibus; folia floralia per’ aequilonga, arcuatim

patula, Iigulata vel oblonga, lobulo parvo, 4plo breviore, profunde

soluto, lanceolato acuto. Amph. flor. parvum foliis suis 2plo

brevius, ad !, bifidum, lobis lanceolatis acutis. Androecia lon-

oissime spicata, in ramis terminalia vel lateralia, bracteis usque ad

10 jugis, dorso papulosis.

Hab. Nova Caledonia. Conception. (Balansa 3694) Herb.

Mus. Paris.

E. connatistipula. St. n. sp. Monoica, olivacea, minor,

corticola, caespitans. Caulis 10—15 mm longus, parum ramosus.

Folia vix contigua, oblique patula, ovata, plana, apice rotundata

vel obtusa. Cellulae ubique 17 «, valde pellueidae. Incrassatio

nulla. Lobulus ad plicam parvam reductus vel omnino nullus.

Amph. parva, dissita, caule parum latiora, transverse inserta, sub-

rotunda, ad medium bifida, sinu late lunato, laciniis porrectis angustis,

acuminatis. Perianthia pseudolateralia, foliis caulinis fere duplo

longiora, compresso obovata, apice truncato-rotundata, longe rostrata,

plicis posticis humilibus, obtusis, late divergentibus; plica antica

subnulla. Folia flor. caulinis minora, oblonga, obtusa vel acuta,

lobulo duplo breviore, profunde soluto, anguste lanceolato, fere lineari.

Amph. flor. oblongum, basi lobulis suis alte coalitum, apice ad 'ı

bifidum, lobis acutis. Androecia cauligena, bracteis 4 jugis.

Hab. Nova Caledonia, in Monte Atso (T. Savcs).

E. corallina. St. n. sp. Dioica? minor, flavo-virens, corti-

cola. Caulis 10—15 mm longus, parum ramosus. Folia imbricata,

oblique patula, late falcato-ovata, apice rotundata, suberenata, concava.

Cellulae apice 12, medio 17, basi 17 X 35 «, incrass. nulla, margi-

nales irregulariter prominulae. Lobulus magnus, folio 2plo brevior,

curvatim oblongus, carina leniter arcuata, sinu amplo excurrens, sub

apice leniter constrictus, ipso apice oblique truncatus, angulo obtuso,.

Amph. majuscula, remotiuscula, caule subtriplo latiora, sinuatim

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F. Stephani.

inserta, fere circularia ad ?!/, bifida, sinu angusto obtuso, lobis latis

obtusis. Cellulae parvae, 8 « solum, Perianthia pseudolateralia,

bası angusta obcuneata excepta fere compresso - subcircularia,

Splicata, plicis posticis divaricatis, humilibus, supra medium perianthii

decurrentibus, rostro parvo; plica antica sat alta. Folia flor. caulinis

majora, falcato-oblonga, obtusa, lobulo duplo breviore, parum soluto,

oblongo, obtuso. Amph. flor. obovatum, perianthio duplo brevius,

rima angusta bifidum, lobis latis ad rimam acutis. Androecia

ignota.

Hab. Insula Radack (Chamisso).

Perianthio latissimo optime distincta.

E. cuspidistipula. St. n. sp. Dioica, pallide virens minor,

corticola, dense caespitosa. Caulis 1—2 cm longus, vage ramosus.

Folia contigua, recte patula, falcato-ovata, obtusa, subplana.

Cellulae apice 8, medio 17, basi 25 «. Incrass. nulla. Lobulus

late ovatus, folio vix 3plo brevior, valde inflatus, carina dein valde

arcuata, sinu profundo in folium abeunte, apice 3plo angustiore

exciso-truncatus, angulo brevidentato. Amph. magna, folii disco

parum minora, subcontigua, usque ad basin fere bifida, sinu lato,

obtuso, laciniis lanceolatis, porrectis, longe acuminatis, acutis.

Perianthia desunt. Flores © pseudolaterales; folia floralia

caulinis longiora, obovato-spathulata, obtusa, lobulo parum breviore,

ligulato, profunde soluto. Amph. florale foliis suis aequilongum,

ovato-oblongum, ad !J; rima angusta bifidum, lobis subligulatis

obtusis. Androecia ignota,

Hab. Queensland (F. M. Bailey 819).

E. fissistipula. St. n. sp. Monoica, subhyalina parva,

corticola. Caulis 2—-3 cm longus, bipinnatus, pinnis pinnulisque

numerosis, inaequilongis, subrecte patentibus. Folia suborbiculata,

caulina multo majora quam ramea, subrecte patula, subplana, im-

bricata, integerrima, margine postico strictiusculo, antico curvato,

Cellulae marg. 17, medio 25, basi 25 X 35 «, trigonis parvis hyalinis

solum ad basin foli. Lobulus oblongo-ovatus, turgidus, apice

exciso in folii marginem cum plica elongata excurrens. Amphig.

caule 3—-4plo latiora, in plano fere circularia, in planta viva valde

concava, ad '/; incisa, oblique patula, lobis ligulatis incurvis, sinu

obtuso vel acuto. Perianthia in ramis lateralibus terminalia, uno

latere innovata, pyriformia, 5 plicata, plicis postieis late divaricatis,

persaepe in unam latam confluentibus, rostro parvo. Folia floralia

caulinis multo minora, late ovata, obtusa, lobulo magno, profunde

soluto obtuso acutove. Amph. flor. oblongum ad !|, rima angusta

bifidum, lobis acuminatis, acutis. Androecia magna, in caule

ramisve terminalia, bracteis 6jugis, confertis.

Hepaticarum species novae IX. 89

Hab. Amboina, Wawani Hila (Dr. G. Karsten). Benguet

prope Luzon (Micholitz)

E. srandispica. St.n.sp. Dioica, olivacea, mediocris, corti-

cola. Caulis 20—25 mm longus, parum ramosus. Folia subimbricata,

oblique patula, ovato-rotunda, concava; cellulae convexae, apice 8,

medio 17, basi 22 «, trigonis magnis. Lobulus inflatus, folio plus

duplo brevior, curvatim oblongus, carina itaque leniter arcuata, levi

sinu excurrens, papulosa, apicem versus angustatus, ipso apice recte

truncatus, angulo obtuso. Amph. remota, caule 3 plo latiora, exciso

inserta, cauli haud appressa eoque convexo-approximata, ad '/; biloba,

lobis obtusis. Perianthia pscudolateralia, pro planta maxima, foliis

caulinis 4plo majora, inflato pyriformia, apice rotundata, brevirostria,

plicis ventralibus usque ad basin decurrentibus vel in unam latam

confluentibus; folia flor. ex angusta basi ovata, patula, lobulis

parum brevioribus, longe solutis, oblongis, obtusis; amph. flor.

spathulatum, maximum, foliis suis subduplo longius, rıma angusta,

breviter bifidum, lobis acutis. Androecia cauligena, magna, bracteis

7-8 jugis, confertis.

Hab. Insulae Catanduanes et Mindanao_ (Philippinae)

(Micholitz).

E. grisella. St.n. sp. Dioica? pusilla, dilute viridis, corticola.

Caulis 10-20 cm longus, vage ramosus. Folia imbricata, oblique

patula, ovata, apice obtusa vel acutiuscula haud pellucida, valde

chlorophyllifera. Cell. apice 12, medio Se erhal 2a

trigonis parvis. Lobulus late ovatus, carina leniter arcuata, sinu

amplo vel nullo excurrente, apice parum angustato, oblique truncatus,

angulo longius dentato. Amph magna, contigua, sinuatim inserta,

cordiformia, ad °, bifida, sinu anguste obtuso, lobis porrectis acumi-

natis acutis. Perianthia parva, pseudo-lateralia, pyriformia, inflata,

apice subtruncata, longius rostrata, plicis posticis late divergentibus,

sacpe in unam latam confluentibus. Folia flor. caulinis duplo

angustiora, subligulata, obtusa, lobulo parum breviore, ligulato.

Amph. obovato oblongum, ad '!; bifidum, sinu acuto angusto, lobis

acuminatis, acutis. Androecia ignota.

Hab. Surinam (Wullschlägel No. 1220).

E. Helmsiana. St.n. sp. Sterilis, dilute viridis, parva, hepaticis

consociata. Caulis 5 mm longus, parum ramosus. Folia imbricata,

oblique patula, late ovata, antice caulem late superantia, concava,

obtusa vel acutiuscula. Cellulae apice 12, medio 25, basi 17 X 35 u,

trigonis parvis. Lobulus maximus, folio 2 plo brevior, valde in-

flatus, carina itaque valde arcuata, levi sinu in folium excurrens, sub

apice profunde constrictus, apice valde angustatus, exciso truncatus,

angulus longo dente filiformi erecto armatus. Am ph. dissita, trans-

er Im u 5

90 F. Stephani.

verse inserta, caule 2 plo vel fere 3 plo latiora, subrotunda, ad '};

bifida, sinu angusto, obtuso, laciniis ovatis obtusis vel acutis. Reliqua

desunt.

Hab. Nova Zelandia. Northern Island (Colenso) Southern

Island (Helms).

Da die Pflanze einen so sehr abweichenden Lobulus besitzt und

daher leicht zu erkennen ist, habe ich sie hier mit aufgeführt, ob-

wohl es angesichts der Abwesenheit aller sexuellen Organe zweifel-

haft ist, zu welchem Genus sie zu stellen sein wird.

E. infestans. St. n. sp. Monoica, parva, flavo-viridis, folii-

cola, laxe caespitans. Caulis 15-20 mm longus, multiramosus.

Folia imbricata, recte patula, ovata-ligulata, apice rotundata, plana;

Cellulae apice 8, medio 17, basi 25% 35 «u. Incrassatio nulla.

Lobulus vel nullus vel parvus, oblongus, carina substricta, margini

folii recte continua, apice exciso -truncatus, angulo dentiformi.

Amphig. dissita, caule 2 plo latiora, transverse inserta, e basi ob-

cuneata subrotunda, ad ?, bifida, sinu angusto obtuso, laciniis obtusis.

Perianthia pseudolateralia, valde compressa, obconica, apice trun-

cato-rotundata, exciso-rostrata, 5 plicata, plicis posticis, humilibus,

late divergentibus, ad medium perianthii decurrentibus. Folia flor.

parva, caulinis multoties minora, ovata, obtusa, lobulo duplo breviore,

oblongo vel lanceolato, profunde soluto. Amph. flor. oblongum,

parvum, lobulis aequilongum, ad ", bifidum, laciniis lanceolatis,

obtusis. Androecia parva, cauligena, bracteis bijugis.

Hab. Tonkin (Balansa) Herb. Mus. Paris. Perianthio compresso

Prionolejeuneis proxima.

E. Jungneri. St. n. sp. Monoica, minor, foliicola, flavo-

virens. Caulis multiramosus 2 cm longus et ultra; folia contigua,

late obovata, obliqua i. e. margine postico substricto, antico valde

arcuato, subplana, recte patentia, integerrima. Cellulae marg. 17 u,

medio 35 ı, basi 25 X 35 «, trigonis parvis hyalinis. Lobulus caule

duplo latior, subquadratus, inflatus, angulo obtuso, exciso-truncatus,

Amph. usque ad *, bifida, laciniis lanceolatis, basi 3 cellulas latis,

parum divaricatis, acutis. Perianthia valde compressa, circum-

seriptione pyriformia, postice bicarinata, plicis longe decurrentibus,

parallelis, papulosis. Folia floralia caulinis similia parum angustiora,

lobulo profunde soluto, lanceolato. Amph. flor. ad ", bifidum,

laciniis lanceolatis acutis parallelis. Androecia parva, cauligena,

bracteis 2—3 jugis, laxe cellulosis, ad carinam valde papulosis.

Hab. Kamerun (Jungner 79).

Proxima Eulej. setistipa, quae differt cellulis minoribus, ad

angulos multo magis incrassatis, perianthiis obovatis, minus compressis,

foliis floralibus multo minoribus quam caulinae.,

Hepaticarum species novae IX. 91

E. lamacerina. St.n. sp. Monoica, parva, dense caespitosa,

dilute viridis. Caulis vage multiramosus, usque ad 15 mm longus.

Folia contigua, ovata, oblique patula, concava, apice obtusa vel

rotundata, margine papulosa. Cell. apice 17, medio 17, basi 17-25 1,

trigonis parvis, basi majusceulis, hyalinis. l.obulus oblongo-rectan-

oulatus, parum inflatus, carina itaque parum arcuata, saepe folii

margini subrecte continua, apice recte truncatus, angulo obtuso.

Amph. parva, caule duplo latiora, transverse inserta, subeircularia,

ad ", acute ineisa, lobis latis obtusissimis. Per. pseudolateralia,

inflato pyriformia, alte 5 plicata, plicis posticis usque ad basin fere

decurrentibus, rostro parvo. Folia floralia caulinis minora, apice

rotundata, lobulo parvo profunde soluto, obovato acuto vel obtuso.

Amph. flor. magnum spathulatum, breviter bilobum, lobis obtusis,

basi utroque latere alte coalitum. Androecia in ramıs longioribus

lobosa, bracteis trijugis.

terminalia, g

Hab. Madeira, Levada de Lamaceros (Mandon).

E. Monimiae St n. sp. Monoica, parva, laete viridis,

foliicola. Caulis 10—20 mm longus, multiramosus, in foliis longe

lateque expansa. Folia parum imbricata, recte patula, oblique

ovata (margine antico magis curvato) plana. Cellulae valde chloro-

phylliferae, apice 10, medio 25, basi 35 «, regulariter hexagonae.

Incrass. angulosa subnulla. Lobulus ad plicam parvam reductus,

angulo obtuse-dentato. Amph. remota, parva, caule parum latiora,

, late lunatim excisa, lobis acutis. Perianthia

transverse inserta, ad ',

pseudolateralia, parva (foliis caulinis subminora) inflato-pyriformia,

apice 5 plicata, plicis humilibus, posticis late divaricatis, rostro majus-

culo. Folia flor. perianthio aequilonga vel parum breviora, oblonga,

margine angulata, lobulo parvo lanceolato, parum soluto, obtuso;

Amph. flor. perianthio duplo brevius, ligulatum, ad"; bifidum,

lobis latis acutis. Androecia cauligena, bracteis 4—6 jugis.

Hab. Brasilia subtropica, Sao Francisco, Tubarao (Ule n. 45 et

n. 264).

E. Nietneri. St. n. sp. Monoica, major, flavescens, musci-

cola. Caulis 2—3 cm longus, paucipinnatus. Folia subrecte patula,

parum imbricata, falcato-ovata, apice obtusa, valde concava. Cellulae

marg. 8 u, medio 17 u, basi 17X35 4, incrassatio nulla. Lobulus

magnus folio duplo brevior, saccatus, carina itaque valde arcuata,

sinu lato profundoque excurrens, basi bullatim inflatus, abrupte

attenuatus et plica longiore in folii marginem abeunte. Amph.

magna, caule 5 plo latiora, subcontigua, exciso inserta, cordiformia,

plano-appressa, ad ', bifida, sinu angusto obtuso, lobis late trian-

gulatis obtusis. Perianthia pseudolateralia, foliis caulinis aequi-

magna, compresso-pyriformia, apice rotundato longerostrata, 5 plicata,

92 F. Stephani.

plicis posticis humilibus divaricatis, ad medium decurrentibus. Fol.

flor. caulinis multo minora, oblonga, obtusa, lobulis parum minoribus, |

oblongis, longe solutis. Amph. florale maximum, perianthio aequi-

magnum, ovatum, ad !, bifidum, lobis acuminatis, obtusis, conni-

ventibus vel tegentibus. Androecia cauligena parva, bracteis

paucijugis.

Hab. Insula Ceylon (Nietner n. 1567 pp.) Herb. Jack.

E. ordinaria. St. n. sp. Dioica, straminea, major, muscicola.

Caulis 3 cm longus, vage pauciramosus. Folia parum imbricata,

oblique patula, optime ovata, valde concava. Cellulae ap. 17,

med. 25, basi 2543 u angulis medioque parietum incrassatis; lobulus

magnus, folio vix 3plo brevior, e basi ovata valde inflata, longe

attenuatus, carina valde curvata, sinu profundo in folium excurrens.

Amph. magna, remota tamen, reniformia ve] rotunda, sinuatim inserta,

ad !, bifida, lobis latis acutis. Per. pseudolateralia, valde compressa,

elongato-obconica, 5 plicata, plicis posticis late divaricatis, humilibus,

apice rotundata, brevirostrata; folia flor. caulinis minora, similia,

lobulo profundissime soluto, lanceolato. Amph. flor. oblongum,

ad '/; bifidum, lobis lanceolatis acutis. Androecia parva, cauligena,

bracteis laxiusculis, 3jugis.

Hab. Nova Caledonia, in Mte. Mu (Balansa).

Cum. E. Nietneri St. comparanda.

E. parvisaccata. St.n. sp. Dioica, laete-viridis, corticola,

dense caespitosa, mediocris,. Caulis 10—15 mm longus, vage

multiramosus. Folia contigua vel parum imbricata, recte patentia,

falcato-ovata, apice rotundata, subplana. Cellulae apice 17 u,

reliquae 25 u trigonis parvis. Lobulus parvus, cauli aequilatus,

subtriangulatus, carina leniter arcuata, levi sinu excurrente, apicem

versus angustatus, cum plica parva in folium excurrens, ceterum

turgidus, convolutus apice obtusangulo plano, folio appresso. Amph.

contigua, maxima, caule 5 plo latiora, sinuatim inserta, subcircularia,

ad '/; biloba, sinu recto acuto, lobis late triangulatis obtusiusculis.

Perianthia ignota. Androecia cauligena vel in ramis terminalia,

spicata, bracteis paucijugis.

Hab. Insula Mindanao (Philippinae) (Micholitz).

Bene distincta foliorum lobulis parvis, tumidis, fere ut in

Hygrolejeuneis.

E. Patersonii. St. n. sp. Dioica? mediocris, flavescens,

hepaticis consociata. Caulis 10--15 mm longus, vage ramosus.

Folia contigua, recte patentia, oblique ovato-rotundata, concava,

margine cellulis /prominulis, papuloso-crenulata. Cellulae 12 A,

incrassatio nulla. Lobulus folio triplo brevior, ovato-saccatus,

carina itaque valde arcuata, sinu profundo in folium excurrens, apice

in:

Hepnticarum species novae IX, 93

angustato angulatim truncato, plica parva excurrente. Amph. parva,

remota, caule vix latiora, transverse inserta, subcircularia, vix ad

medium incisa, sinu subrecto, lobis obtusis, papulosis. Perianthia

pseudolateralia, longe exserta, inflato-pyriformia, superne pentagona,

rostro parvo. Folia flor. caulinis duplo minora, oblonga, obtusa

lobulo magno, parum breviore, lanceolato, profunde soluto, obtuso.

Amph. flor. e basi cuneata obovata, ad medium bifida, sinu obtuso

lato, lobis obtusis. Androecia ignota.

Hab. Java (Paterson. Herb. Brotherus).

E. Perrottetii. St. n. sp. Diocia? parva fulva corticola.

Caulis 10—12 mm longus, irregulariter pauciramosus. Folia con-

fertissima, e basi saccata suberecta, late ovata, apice rotundata, valde

concava. Cellulae apice 17 u, medio 25 u, basi 25 X 35 u, angulis

medioque parum incrassatae; Jobulus saccatus, maxime inflatus,

curvatim-oblongus, versus apicem angustatus, sensim in folii mar-

ginem excurrens, carina scmicircularia sinu profundo in folium abeunte,

Amph. imbricata, cauli appressa, magna, sinuatim inserta, sub-

circularia vel reniformi-rotunda, caule 3—4 plo latiora, ad ',; acute

inceisa, lobis late triangulatis acutis. Perianthia pseudolateralia

longe exserta, compressa, clavato-pyriformia, apice subrecte truncata,

brevirostria plicis ventralibus late divergentibus, usque ad basin

decurrentibus. Folia flor. perianthio plus duplo breviora, oblongo-

ovata, obtusa, lobulo duplo breviore, oblongo, parum soluto, acuto;

amph. oblongo-obovatum, foliis suis majus, rima angusta ad '/, bifidum,

lobis acutis. Androecia ignota,

Hab. India oriental. Mtes. Nilgerrienses (Perrottet).

E. setistipa. St. n. sp. Monoica; parva, hyalina, stellatim

in foliis expansa. Caulis 10—15 mm longus, multiramosus. Folia

contigua vel parum imbricata, plana, subrecte patentia, ovato-ligulata,

apice rotundata. Cellulae apicales 12

‚ medio 25, basi 25 X 35 u,

valde pellucidae, trigonis subnodulosis. Lobulus parvus, subplanus,

subrectangulatus, caule parum latior, apice exciso-truncatus, angulo

dentiformi, obtuso, vel ad plicam minimam reductus. Amphig.

rcmota, parva, transverse inserta, usque ad basin fere bifida, limbo

1 cellula alto, laciniis basi 2 cellulas latis, apice setaceis, parum

divaricatis. Perianthia pseudolateralia, compresso - pyriformia,

5 plicata, plica antica saepe obsoleta, plicis posticis humilibus, leniter

divaricatis, usque ad medium perianthii decurrentibus, rostro tenui

longiusculo. Folia flor. caulinis 4 plo minora, obovato-oblonga,

obtusa, lobulo plus minus late lanceolato. Amph. flor. oblongum,

ad '; bifidum, laciniis lanceolatis. Androccia in caule ramisve

terminalia, foliis caulinis conseeutiva, bracteis 4-5 jugis, inflato-

complicatis, confertis, apice emarginato-bilobis, lobis obtusis.

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94 F. Stephani.

Hab. Brasilia subtropica (Ule No. 114).

Cum E. Magnoliae comparanda.

E. subigiensis. St. n. sp. Monoica, mediocris viridis, ad

arborum pedem caespitans. Caulis 1—2 cm longus, multiramosus.

Folia contigua, late ovata, obtusa, plana. Cellulae apice 12,

medio 15, basi 35 «. Incrassatio nulla. Lobulus subnullus vel

rectangulatus, caule duplo latior, inflatus apice recte truncatus, angulo

obtuso, plano, occulto vel vix visibili; carina folii margini recte

continua. Amph. remota, caule 3 plo latiora, transverse inserta,

subeircularia, profunde lunatim excisa, laciniis lanceolatis, leniter

falcatis, conniventibus. Perianthia pseudolateralia, compresso-

pyriformia, 4 plicata, plicis posticis humilibus, divaricatis, longe

decurrentibus, apice rotundata, subexciso-rostrata. Folia flor.

perianthio duplo breviora, caulinis multo minora obovata, lobulo

lanceolato ad '/, soluto, acuto; amph. flor. foliis suis aequimagnum,

oblongum, ad !/; bifidum, lobis lanceolatis, falcatis, conniventibus vel

cruciatis. Androecia parva, in ramulis terminalia, bracteis pauci-

jugis.

Hab. Insulae Caramuan, Mindanao (Philippinae) (Micholitz).

E. Uleana. St. n. sp. Monovica, parva, dense caespitosa,

corticola, rufo-fusca. Caulis 10—15 mm, multiramosus. Folia

parum imbricata, oblique patula, antice longe soluta, subplana, ovata,

subacuta vel obtusata. Cell. ap. 17, med. 25, basi 25 « trigonis

parvis. Lobulus normaliter ovatus, inflatus, apice obtusus, folio

4 plo brevior, carina leniter arcuata, levi sinu in folium excurrens,

persaepe tamen ad plicam angustam reductus. Amph. minima,

cauli aequilata, transverse inserta, ovato-rotundata, ad ', bifida,

lobis latis obtusis, sinu saepe angusto. Per. pseudolateralia, juniora

oblongo-clavata, adulta basi turbinata medio supero abrupte angu-

latimque ampliata, valde compressa, apice emarginata, longe rostrata,

plicis posticis late divergentibus, humilibus. Folia flor. caulinis

duplo minora, acuta, lobulo lanceolato ad '/Ja soluto. Amph. flor.

ligulatum, apice breviter emarginatum, bidentatum, lobis obtusis,

utroque latere alte coalitum. Androecia parva, cauligena, bracteis

laxe dispositis 3—4 jugis.

Hab. Brasilia subtropica (Ule 269).

E. Wichurae. St. n. sp. Dioica, pusilla, dilute-olivacea,

caespitans, corticola. Caulis 10—15 mm longus, vage ramosus.

Folia imbricata, subrecte patula, late ovata, apice acutiuscula vel

obtusa, concava, valde pellucida. Cellulae apice 12 u, reliquae

17 X 25 u, trigonis parvis. Lobulus majusculus oblongus, carina

arcuata, levi sinu excurrens, apicem versus leniter angustatus, ipso

apice oblique truncatus, angulo acuto. Amph. remota, fere circularia,

Hepaticarum species novae IX. 95

transverse inserta, basi late cuneata, ad medium bifida, sinu recta

acuto, parietibus strictis, lobis late triangulatis, acutis. Perianthio

pscudolateralia, ovato-obconica, parum compressa, apice emarginata,

longius rostrata, alte quinqueplicata, plicis posticis divergentibus, ad

medium perianthii decurrentibus. Folia floralia caulinis minora,

duplo angustiora, late acuminata, acuta, lobulo 2plo breviore, lanceolato;

amph. flor. parvum, lobulis aequilongum, breviter ligulatum,

utroque latere coalitum, ad ', acute incisum, lobis triangulatis,

acuminatis, acutis. Androecia ignota.

Hab. Java (Wichura Herb. Mus. Berol.).

Euosmolejeunea. Spruce.

E.Baileyana. St.n. sp. Dioica, Nlavo-viridis, dense cacspitosa,

corticola, gracilis. Caulis 3—4 cm longus, multiramosus, ramis

paueipinnatis. Folia parum imbricata, ex erecta basi patula, obovato,

rotunda, apice, rotundata, anguste recurva. Cell. dorso papulosae,

apice 8, medio 1712, basi 2517 « trig. magnis; valde chlorophyliliferae.

Lobulus parvus ovato-oblongus, oblique adscendens vel fere erectus,

carina substricta, sinu profunde in folium excurrens, apice exciso

grossedentato. Amph. foliis duplo minora, subreniformia, profunde

exciso inserta, alis accretis, apice ad !, profunde lunatim excisa,

lobulis leniter acuminatis, acutis. Flores © pseudolaterales; folia

floralıa caulinis duplo fere longiora anguste oblonga, obtusa vel

subacuta, lobulo '; breviore, lanceolato, apice longius soluto. Amph.

flor. ovatum, apice angustatum, breviter emarginato bidentatum,

dentibus, tenui-acuminatis conniventibus, acutis. Androecia ignota.

Hab. Australia, Queensland (Bailey 673). Involucro femineo

facile distinguenda.

E. condensata (Spruce ms.) Steph. Dioica, magna, longe

lateque caespitans, Jaxe intricata, flavo-rufescens. Caulis 6-8 cm

longus, paueiramosus, ramis longis remote breviterque pinnatus.

Folia confertissima, subrecte patula, late oblique ovata, subacuta

vel obtusa, late decurva. maxime papulosa. Cellulae apice 17 u,

medio 25, bası 2535

apices papularum semper grosse incrassatae. Lobulus parvus,

caulis diametro haud major, oblongus, carina oblique adscendens,

substricta, sinu profundo in folium excurrens, apice exciso-truncatus.

Amph. maxima, profundissime exciso-inserta, optime cordiformia,

alis basalibus liberis ampliatis rotundatis, parum latiora quam longa,

marginibus lateralibus valde incurvatis, apice breviter bifidis, sinu an-

gusto obtuso, lobis apieulatis. Perianthia pseudolateralia, foliis cau-

linis parum longiora, compresso-pyriformia, apice truncato rotundata,

«, trigonis, magnis, saepe late confluentibus;

brevissime rostellata, alte 5 carinata, carinis papulosis. Fol. flor.

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96 F. Stephani,

caulinis aequimagna, angustiora, falcatim patula, lobulo lineari, duplo

breviore, longe accreto. Amph. flor. lobulis aequilongum, late

obovatum, a perianthio squarrose recurvum, ad !; bifidum. Androec.

ignota.

Hab. Peruvia, in Monte Campana et in Monte Cerro Pelado.

(Spruce).

Planta pulcherrima ad celeberr. auctore in Hepaticis And.& Amazon.

suis sub nomine E. fragrantissima var. descripta.

E. incerta. St.n.sp. Dioica, parva, flavo-rufescens. Caulis

15—20 mm longus, parum ramosus. Folia contigua vel parum

imbricata, subrecte patula, late ovata, apice rotundata, subplana. Cell.

apice 12, medio 25, basi 25.30 « trigonis magnis, Lobulus folio 3

plo. brevior, turgidus, basi 2 plo latior quam apice, carina leniter

arcuata, levi sinu excurrens, sub apice valde constrictus, ipso

apice oblique truncatus, in marginem attenuatus, angulo grosse

dentato. Amph. parva, caule 2 plo solum latiora, exciso inserta,

e basi cuneata subrotunda, vix ad '/, bifida, sinu acuto subrecto,

lateribus strictis lobisque latis obtusis. Per ignota. Flores fem.

pseudolaterales. Folia flor. caulinis submajora, ovato-oblonga,

lobulus magnus, folio duplo solum brevior, linearis acutus vel obtusus,

usque ad apicem fere connatus. Amph. flor. maximum, foliis suis

aequimagnum, obovato-oblongum, ad !/; anguste incisum, lobis

acuminatis acutis. Androecia ignota.

Hab. Surinam (Wullschlägel).

Amph. parvis aliena, reliquis notis tamen omnino congener,

cum E. parvistipula comparanda, quae differt amphig. lobis

acuminatis vel fere apiculatis.

E. integristipula. St.n.sp. Dioica, in ramulis arcte repens

vel intricata, in sicco brunnea, caulis 4-5 cm longus, pauciramosus,

ramulis brevibus, remotis. Folia imbricata, recte patentia, in plano

falcato-ligulata, valde concava, apice arcte recurva, antice grosse

papillata, papillis hyalinis; margine postico substrieto, antico valde

arcuato, caulem haud superante, Cell. marg. 17, med. 25, basi

17 X 35 u, trig. magnis. Lobulus parvus, cauli angustior, oblique

adscendens, oblongus, carina parum arcuata, recto angulo in folii

marginem exeunte, apice longius dentatus, excisus. Amph. foliis

aequimagna, integerrima, reniformia, basi angusta, excisa, medio

caulis imposita i. e. caulem haud semi-amplectentia ut in aliis Lejeuneis,

sed caule angustiora, deinde facillime decidua. Flores fem. in

ramulis parvis terminalia, haud innovata, perianthia juniora quinque-

plicata, rostro parvo, fol. floralia margine papulosa, caulinis

aequimagna, similia, suberecta, valde recurva, lobulo lanceolato, obtuso,

Hepaticarum species novaec IN. 97

duplo breviore. Amph. flor. maximum, foliis suis majus, totam

inflorescentiam obtegens, valde concavum, marginibusque incurvis.

Androecia ingnota.

Hab. Amboina, in Mte. Salhoetoe (Dr. G. Karsten),

E. Luerssenii. St. n. sp Monoica, mediocris, muscicola,

favo-virens. Caulis 25—30 mm longus, vage pauciramosus. Folia

parum imbricata, recte patentia, subligulata, valde concava, apice

obtusa, decurva, dorso papulosa. Cellulae apice 8, medio 17, basi

17 X 25 « trig. magnis. Lobulus folio fere 4 plo brevior, ovato-

triangulatus, apice fere 3 plo angustior quam basi, carina oblique

adscendens, leniter arcuata, angulo subrecto in folium excurrens,

sub apice constrictus, ipso apice exciso truncatus, ad angulum dente

grosse hamato armatus. Amph. magna caule 6 plo latiora, foliis

tamen minora, rectangulato-reniformia, profunde exciso-inserta, alis

haud liberis, apice brevissime emarginato-bidentula vel integerrima.

Flores fem. pseudolaterales. Folia flor. caulinis longiora, obtusa,

lobulo lineari, apice parum soluto, obtuso vel acuto. Amph. flor.

subeireulare, apice minute bidentulum. Androecia cauligena, parva,

bracteis 4 jugis, laxe dispositis.

Hab. Java. Herb. Luerssen. Königsberg).

Harpalejeunea. Spruce.

H. Mohrii. St. n. sp. Monoica, fusco-virens parva, muscis

consociata. Caulis 10—15 mm longus, vage pauciramosus. Folia

contigua, e basi semierecta, falcatim divergentia, oblongo-ovata, apice

late acuminata, acuta vel obtusa, decurva. Cell. apicales 17 u,

reliquae 25 «, incrass. nulla. Lobulus folio triplo brevior, oblongus,

carina adscendens, arcuata, sinu profundo excurrens, sub apice

constrictus, Ipso apice oblique truncatus, cum plica longiore in folii

marginem attenuatus, angulo obtuso. Amphig. minuta, caule vix

latiora, transverse inserta, reniformia, ad *!i, biloba, lobis latis

divaricatulis, obtusis sinu acuto recto. Perianthia pseudolateralia,

foliis caulınis vix majora, compresso obconica, apice retuso-truncata,

brevirostria, carinis denticulatis. Folia flor. perianthio parum

breviora, oblonga, late acuminata, obtusa, lobulo !, breviore, sub-

lineari, apice parum soluto, obtuso. Amph. flor. obovato-oblongum,

ad '; bifidum, rima angusta, lobis obtusis. Androecia parva,

globosa, bracteis bijugis.

Hab. Brasilia, Petropolis (Ule), Cordova (Mohr).

H. uncinata. St.n.sp. Sterilis, exigua, hyalina, aliis hepaticis

mixta. Caulis 6-8 mm longus pauciramosus. Folia contigua,

ovato-falcata, margine irregulariter papulosa, e basi Saccata, crecta,

falcato-patula, apice angustato abrupte pilifera (pilum a 56 cellulis

Hedwigia ba. NXAV. 1896, ji

98 F. Stephani.

superpositis formatum, pro more patulum, rarius hamatim deflexum).

Cellulae ap. 12 u, reliquae 12 X 17 a, trigonis parvis. Lobulus

pro planta maximus, folio vix duplo brevior, saccatus, erectus, valde

inflatus, sub apice constrictus, ipso apice valde angustatus, trun-

catus, angulo hamatim dentatt. Amphig. parva caule parum

latiora, ad medium biloba, lobis divergentibus, breviter ligulatis apice

truncatis. Reliqua desunt.

Hab. Cuba (Wright), Trinidad (Crueger), Santo Domingo (Eggers).

H. pilifera Spruce, plane diversa est lobulo quadruplo breviore

quam folium.

Homalolejeunea. Spruce.

H. corcovadensis. St. n. sp. Monoica, minor, rufa, in

cortice caespitans. Caulis 2—3 cm longus, paucis ramulis in-

structus. Folia conferta, oblique patula, oblonga, late acuminata,

acuta, apice decurva. Cell. apice 17, reliquae 25 u trigonis distinctis.

Lobulus magnus, folio plus duplo brevior, oblongus, ad carinam

valde inflatus, medio supero folio appresso, carina arcuatim ad-

scendens, levi sinu excurrens, apice oblique truncatus, angulo api-

culato, altero dente parvo illo approximato. Amph. parva, caule

vix 3plo latiora, quadrato rotunda, recurvo-patula, sinuatim inserta,

haud decurrentia. Perianthia pseudolateralia compresso-pyriformia,

apice rotundato brevirostria, folia flor. caulinis similia, magis

acuminata, lobulo fere triplo breviore, plicaeformi, lineari, apice

breviter acuminato. Amph. flor. late ovatum, foliis suis majus,

recurvo patulum, apice obtuso. Androecia in medio caulis, bracteis

foliis consecutivis confertis, subaequaliter bilobis, lobis angulatis vel

obtuse subdentatis.

Hab. Rio de Janeiro, in Mte. Corcovado (Ule 92).

Pulcherrima et distinctissima species, lobulo magno, semiinflato

facile cognoscenda.

H. Cruegeriana. St.n.sp. Dioica, major, rufescens, apicibus

dilutioribus, dense depresso caespitosa. Caulis 4—5 cm, ramulis

brevibus sparsis. Folia valde conferta, oblique patula, late ovata,

apice rotundata, subplana. Cell. ap. 17 u med. 34, basi 34 X 50 ı,

trigonis majusculis acutis. Lobulus subduplo brevior, oblique

adscendens, subrectangulatus, i. e. carina stricta, angulo recto in

folium abeunte, apice recte truncatus, angulo acuto. Amph. pro

planta parva, sinuatim inserta, fere circularia, caule 5plo latiora,

valde concava, marginibus recurvis. Per. magna, compressa, oblonga,

apice truncato rotundata, longerostrata. Folia flor. caulinis parum

angustiora, lobulo lanceolato, 2 plo breviore, longe soluto, acuto.

Amph. flor. maximum, foliis suis duplo latius obovato -rotundum,

Hepaticarum species novae IX. 99

apice breviter incisus, lobis acutis recurvis. Amph. subflorale caulinis

simile, majus, apice emarginato-bidentulum. Androecia ignota.

Hab. Trinidad (Crueger). Brasilia, Petropolis (Rudolph, Ule).

H. extensa. St.n.sp. Frustulum. Folia conferta, late ligulata,

recte patentia, subplana, apice truncato-rotundata. Cellulae ap.

17, med. 25, basi 25 X 30 « angulis medioque incrassatae. Lobulus

magnus, folio vix 4 plo brevior, subrectangulatus, carina stricta, folii

margini fere recte continua, apice oblique truncatus, angulo acuto,

Amph. maxima, foliis parum minora, exciso inserta, haud anguste

decurrentia, late reniformia (duplo latiora quam longa) basi gıbbosa,

ceterum plana. Reliqua desunt.

Hab. Peruvia (Herb. Meissner sub nomine Lej. squamata) in

cortice Chinae inventa.

Obgleich das Ex. sehr unvollständig ist, repräsentirt das Wenige

doch sicher eine ausgezeichnete Art, so dass ich wenigstens auf die

Pflanze aufmerksam gemacht haben möchte

H. Henriquesii. St. habe ich seiner Zeit als Art beschrieben,

da sie an Grösse und Zähnelung des Blattes bedeutend von H. ex-

cavata Mitt. abweicht. Nachdem ich inzwischen ein reichhaltiges

und fruchtendes Material, von Dusen und Jungner gesammelt, er-

halten habe, ist es mir zur Gewissheit geworden, dass beide Pflanzen

nicht verschieden sind, dass H. Henriquesii sogar als die gesunde

normale Pflanze zu gelten hat, während die von Mitten beschriebene

Pflanze eine sterile etiolirte Schattenform darstellt, ich muss daher

meinen Namen einziehen, da H. excavata Mitten die Priorität hat.

Hygrolejeunea. Spruce.

H. bahiensis. St.n. sp. Monoica, pallida, parva. Caulis

10—15 mm longus, vage ramosus. Folia parum imbricata, oblique

patula, ovata, apice obtusa vel rotundata. Cell. valde pellucidae,

apice 17, medio 25, basi 25 X 35 «, trigonis majusculis. Lobulus

folio 3plo brevior, ovatus vel oblongus, inflatus, carina arcuatim

adscendente, levi sinu exeunte, apice valde oblique truncatus, cum

plica attenuata in folium excurrens. Amph. caule 4—5 plo latiora

exciso inserta, subrotunda, ad medium bifida, sinu angusto obtuso, lobis

acuminatis obtusis. Perianthia pseudolateralia, compresso pyriformia,

longe rostrata, 5 plicata plicis posticis usque ad basin decurrentibus.

Folia flor. caulinis similia, lobulo duplo breviore, obtuso, longe

soluto, amph. flor. oblongum, foliis suis aequimagnum, ad '/, bifidum,

rima angusta, lobis angustis obtusis. Androecia in caule ramisve

terminalia, magna, bracteis confertis, 6—7 jugis, saccatim erectis,

subaequaliter bilobis, lobis obtusis.

Hab. Bahia (Didrichsen).

Cum H. deplanata et leucophylla comparanda.

EEE,

100 F, Stephani.

H. cordigera. St. n. sp. Dioica, mediocris, pallescens,. Caulis

1—2 cm longus, vage longe ramosus. Folia imbricata, ovato-

falcata, i. e. margine postico substricto, antico curvato, apice rotundata,

antice caulem superantia, haud papulosa. Cellulae ap. 12, medio 17,

bası 25 X 35 a trigonis parvis. Lobulus parvus, caulis diametro

duplo longior, ovatus, carina stricta, recte in folii marginem continua,

apice parum angustatus, excisus, angulo dentiformi. Amph. contigua,

caule 4 plo latiora, exciso inserta, subrotunda, ad !/, bifida, rima

angusta lobis acutis vel acuminatis. Perianthia in ramis parvis

lateralibus terminalia, magna, foliis caulinis duplo latiora, superne

valde compressa, late obcordata, i. e. ex angusta basi sensim valde

dilatata, apice in auriculas compressas rotundatas supra rostrum alte

conniventes ampliata. Folia flor. caulinis parum minora, lobulo

magno, (duplo solum breviore) plano rectangulato, obtuso; amph.

flor. ligulatum, ad !/; bifidum, rima angusta, lobis acutis. Androecia

ignota.

Hab. Madagascar (ex Herb. Gottsche).

Die Form der Blätter, deren Zellbau und Lobulus bringen die

Pflanze nahe an Hygrolejeunea, auch die Form des Perianths würde

in diese Gattung, die bereits Aehnliches enthält, ohne grösseres

Bedenken hineinpassen; abweichend ist dagegen der terminale Blüthen-

stand, eine Eigenschaft, die zwar in manchen Gattungen ganz con-

stant ist, in anderen wieder nicht, so dass ich sie nicht zum Aus-

gangspunkt eines neuen Genus machen möchte, bis weiteres Material

ähnlicher Arten gefunden sein wird.

H. costaricensis. St. n. sp. Dioica, magna, flavicans,

museicola. Caulis 4-5 cm longus, flaccidus, paucis pinnulis in-

structus. Folia contigua, subrotunda, recte patentia, apice decurvula,

margine celluloso-crenulata, dorso caulem parum excedentia. Cell.

apice 17, medio 20 X 35, basi 20 X 50 u, trigonis subnullis. Lo-

bulus minimus, cauli aequilatus, inflato conicus, apice oblique

truncatus, angulo acuto. Amph. parum imbricata, maxima, foliis

multo majora, optime reniformia, integerrima, apice anguste recurva,

usque ad medium fere exciso inserta. Per. in ramulis parvis pseudo-

lateralia, inferne anguste obconica, compresso - cylindrica, medio

supero 5 plicata, plicis in medio perianthii abrupte ampliatis, inflatis,

in sacculum pendulum protractis, apice rotundato-conico con-

currentibus, rostro inter plicarum umbonem immerso. Folia flor.

caulinis multo minora, patula, lobulo oblongo, obtuso, longe soluto.

Amph. flor. subeirculare, uno latere coalitum foliis suis aequimagnum.

Androecia ignota.

Herb. Costarica, Carrisal 2800 m (Pittier).

u a ale DE En a il u 9 een Te a ar © Er. N ie nd 0 um

a. ie ae nn Bl Zi a;

Iepaticarum species novae IN, 101

H. decurrens. St.n. sp. Monoica, major, olivacea. Caulis

5—6 cm longus, multiramosus. Folia imbricata, recte patula, sub-

rotunda, apice anguste recurva. Cellulac apice 12, medio 17,

basi 17 X 25 « trig. majusculis, acutis. lLobulus parvus, cauli vix

aequilatus, late triangulatus, carina sinuata, longe in caule decurrente,

apice 4 plo angustior quam basi, oblique truncatus angulo obtuso.

Amph. magna, imbricata, integerrima, reniformia, duplo latiora quam

longa, foliis aequilata, profunde sinuatim inserta, alis accretis.

Perianthia pseudolateralia, magna, bası longe stipitata, medio

supero pyriformia, 5 plicata, plicis angulatim repandis, posticis usque

ad medium decurrentibus, rostro magno. Folia flor. caulinis multo

minora, oblonga, obtusa, lobulo 2 plo breviore, lanceolato ad medium

soluto. Amph. flor. ovatum, foliis suis acquilongum, obtusum,

integerrimum. AÄndroeciaparva, cauligena, globosa, bracteis pauci-

jugis.

Hab. Java (Prof. Stahl).

Der Lobulus folii zeigt hier nicht eine sackförmige Ausbuchtung

der carina conjunctionis, sondern eine Kinbuchtung; ich habe ein

solches Verhalten immer carına sinuata genannt, das Gegentheil, die

Ausbuchtung carina arcuata. Bei den älteren Autoren ist für sinus

bald der eine bald der andere Begriff oewählt, ähnlich wie carına

und plica, die auch fortwährend verwechselt werden.

H. decurvifolia. St. n. sp. Dioica, albicans, major, longe

lateque caespitans, corticola. Caulis3 + cm longus, longeramosus.

Folia confertissima, recte patula, ovato-falcata, valde concava, apice

decurva. Cellulae apice 17, medio 17 X 25, basiı 25 X 50 u, trigonis

nullis. Lobulus parvus, ovatus, recte a caule patente, apice recte

truncatus, angulo dentiformi, carina strieta,) ab apice carinae

margo ventralis folii abrupte sinuatim adscendit. Amph. magna,

conferta, imbricata, sinuatim inserta, subcircularia, apice brevissime

biloba, lobis obtusis, rima angusta. Perianthia pseudolateralia,

compresso obeonica, superne alte 5 plicata, plicarum apices rotundatı,

rostro magno. Folia flor. caulinis submajora, ovata, rotundata vel

subacuta, lobulo oblongo vel lanceolato, longe soluto, parum breviore,

Amph. flor. lobulis aequilongum, late ovatum, breviter bidentulum.

Androecia ignota.

Hab. Insula Mindanao (Micholitz), Amboina (Karsten), Viti

(Graeffe).

H. devexiloba. St.n.sp. Dioica, dilute flavovirens, minor,

longe lateque caespitans, corticola. Caulis 2—3 cm longus, vage

ramosus. Folia conferta, ovato-falcata, subplana, apice rotundata.

Cell. apice 17, reliquae 25 «, incrassatio nulla, marginales conico

prominulae. Lobulus parvus, cauli aequilatus, ovatus, decurvus,

102 F. Stephani.

apice angustato, exciso, angulo dentiformi, carina vel stricta, recte

a caule patula, vel decurva; ab apice carinae folii margo ab-

rupte breviterque sinuatus es. Amph. foliis aequimagna,

imbricata, reniformia, integerrima, sinuatim inserta, alis accretis.

Perianthia desunt. Androecia parva, cauligena, bracteis 2— 3

jugis.

Hab. Insula Mindanao (Micholitz), Viti (Graeffe).

H. grossecristata. St. n. sp. Monoica, fulva, major sed

gracilis, pendula et laxe caespitans. Caulis 4-5 cm longus pauci-

pinuatus. Folia imbricata, oblique patentia, ovata, apice obtusa,

concava. Cell. apice 12, medio 17, basi 17 X 25 wu trig. magnis

acutis. Lobulus folio 3 plo brevior, turgidus, e basi ovata longe

acuminatus, valde convolutus (apice itaque perfecte occulto) e basi

ovata longe acuminatus; carina leniter arcuata, levi sinu excurrens,

Amph. magna, imbricata, foliis majora, subrotunda, basi exciso

inserta, alis accretis, ad !/, bifida, rima angusta, obtusa lobis porrectis

vel conniventibus acutis Per. in ramulis pseudolateralia, saepe

seriata, inflato pyriformia, superne alte 5 plicata, plicae excrescentibus

foliaceis grosse corrosae, cristas valde irregulares formantes, posticae

vix usque ad medium decurrentes; rostrum latum ore valde dilatato,

eroso, Folia flor. arcte appressa, lanceolata, obtusa, lobis ligulatis

brevioribus. Amph,. flor. utroque latere alte coalitum, ovatum, ad

'; bifidum, rima angusta, lobis longe acuminatis, Androecia cauli-

gena, parva, bracteis 3 jugis.

Hab. Africa trop. occid. Insula Sao Thome. (Moller

No. 45 p. p.).

H. laxiretis. St. n. sp. Dioica, minor dilute flavo- virens,

dense/caespitosa. Caulis 20—25 mm longus, varie ramosus. Folia

parum imbricata, recte patula, ovata, apice rotundata. Cell. magnae,

25 u, basales 35 « angulis medioque parietum incrassatae, margine

papulosae. Lobulus ovatus, folio plus triplo brevior, inflatus, apice

angustato excisus, angulo dentiformi, carina valde arcuata, sinu

profundo in folii marginem divergentem excurrens. Amph. maxima,

foliis majora, cordiformia, exciso inserta, alis rotundatis, ad ', bifida,

sinu subrecto obtuso, lobis triangulatis acutis,. Folia flor. caulinis

majora, oblonga, obtusa vel acuta, lobulis magnis, parum brevioribus,

ligulatis. Amph. flor. foliis suis aequilongum, ovato-oblongum, ad

!/, bifidum, sinu angusto acuto, lobis acuminatis acutis. Androecia

ignota.

Hab. Insula philippinensis Benguet (Micholitz).

Eine schöne, zarte Pflanze, welche in allen Theilen den typischen

Character der Gattung ausgesprochen zur Schau trägt; auffallend ist

die bedeutende Grösse der Amphig.

Hepaticarum species novae IX. 103

H. parvicalycina. St. n. sp. Dioica, flavo-virens, mediocris.

Caulis 2 cm longus, dense breviterque pinnatus. Folia conferta,

oblique patula, magna, ovato-falcata, apice rotundata, margine antico

valde curvato, postico strictissimo. Cell. apice 17, medio 25, basi

17xX35 u angulis medioque incrassatae. l.obulus parvus, caulis

diametro parum longior, subplanus, carina stricta, folit margini recte

continua, apice oblique truncatus, angulo acuto. Amph. imbricata,

caule 4 plo latiora, sinuatim inserta, subeircularia, ad '/; bifida, rima

angusta, acuta, lobis acutis. Perianthia in ramulis pseudolateralia,

foliis caulinis multo minora, anguste obconica, compressa, 5 plicata,

plicis angulatis, posticis longe decurrentibus, apice emarginata, longe

rostrata. Folia flor. caulinis 2 plo breviora, ligulata, lobis aequi-

longis, lanceolatis, usque ad basin fere solutis. Amph. flor. ad

?, bifidum, lobis lanceolatis porrectis acutis. Androecia ignota.

Hab. Java. (Herb. Ldbg. n. 6911 in Herb. Musei Vindob.).

Perianthio pro planta minimo ab omnibus congeneribus distincta.

H. patellirostris. St. n. sp. Monoica, mediocris, flavescens,

laxe caespitans, corticola. Caulis 3- 4 cm longus, remote pinnatus,

pinnulis longis recte divaricatis. Folia contigua vel remotiuscula,

oblique patula, ovata, medio supero acuminata, obtusa, suplana.

Cell. 17 «u basi 17X35 « angulis medioque parietum parum incrassatae.

Lobulus parvus, cauli aequilatus, late triangulatus, carina stricta,

oblique adscendente foliique margini recte continua, apice valde

angustata, excisula. Amph. magna, contigua, foliis fere aequimagna,

optime cordiformia, exciso inserta, alis liberis ampliatis, rotundatis,

ad medium bifida, sinu angusto obtuso, laciniis porrectis acuminatis

acutis. Per. in ramulis parvis pseudolateralia, pyriformia, 5 plicata,

plicis brevibus, parallelis, usque ad medium perianthii decurrentibus,

rostro lato ore dilatato, crenulato. Folia flor. arcte appressa,

caulinis aequilonga, anguste lanceolata, obtusa, lobulo simili, parum

breviore, ad medium soluto. Amph. flor. utroque latere alte coa-

litum, oblongum, ad '/; bifidum, rima angusta, lobis latis, acutis.

Androecia cauligena, parva, bracteis 3 jugıis.

Hab. Africa occ. trop. Insula Sao Thome. (Moller n. 51 p. p.).

H. Patersonii. St. n. sp. Dioica, flavicans, mediocris,

muscicola. Caulis 2—3 cm longus, laxe longeque pinnatus. Folia

parum imbricata, recte patula, ovato-rotundata, subplana. Cell.

17X25 u, basi parum longiores, haud incrassatae. Lobulus parvus,

cauli aequilatus, ovatus, carina saccata, oblique adscendens, sinu

amplo excurrens, sub apice constrictus, apice excisus, dente majore

armatus. Amph. reniformia, 2plo latiora quam longa, profunde

exciso inserta, alis accretis, apice haud late rotundatus, sed leniter

angustatus, quasi rotundato-acuminatus, Ipso apice recte truncatus

5 ( ,; Re er

104 F, Stephani.

vel subemarginatus, angulis obtusis. Perianthia pseudolateralia,

maxima, compresso-pyriformia, apice truncato-rotundata, alte 5 plicata,

plicis posticis parum divaricatis, in medio perianthii desinentibus,

rostro magno. Folia flor. caulinis majora, ovata, obtusa, lobo

duplo breviore, ligulato, longe soluto. Amph. flor. foliis suis 2 plo

latius, e basi cuneata subrotunda, '/;, bifida, sinu recto, lobis latis

obtusis. Androecia ignota.

Hab. Java (Paterson), Borneo (Everett). Amphig. curiosissimis

distincta.

H. petropolitana. St. n. sp. Dioica, magna, flavicans,

Naccida, laxe intricata. Caulis 6-7 cm longus, dense pinnatim

ramosus, aliis ramis flagellatim attenuatis subsimplicibus. Folia

imbricata, papulosa, recte patula, late ovata, apice acuto decurvo.

Cell. ap. 17, med. 25, basi 25%X40 4 trigonis magnis attenuatis.

Lobulus parvus, caulis diametro aequilongus, subrectangulatus

carina stricta, oblique adscendens, levi sinu in folium excurrens,

apice oblique truncatus, angulo distincte dentato. Amph. magna,

foliis parum minora reniformia, ad '"; exciso-inserta, alis accretis,

apice ad ', incisa, rima angusta lobis acutis vel apiculatis. Perianthia

pseudolateralia, foliis caulinis parum longiora ex angusta basi oblonga,

lateribus subparallelis, apice truncato-rotundata, rostro brevissimo,

5 plicata, plieis posticis humilibus usque ad basin fere decurrentibus,

parallelis papulosis. Folia flor. caulinis duplo angustiora acuta,

lobulo duplo breviore, ovato vel oblongo, parum soluto; amph.flor.

late obovatum, ad !/, incisum, rima angusta, lobis apiculatis.

Androecia ignota.

Hab. Brasilia. Petropolis ’et Nov. Friburgum. Adhuc

semper cum H. cerina commutata, quae differt statura multo minore

foliis oblique patentibus, lobulo majore, inflato, curvatim adscendente

amphig. apice late emarginatis.

H. rosea. St. n. sp. Dioica, flavo-rufescens, apicibus saepe

roseis, mediocris, muscis consociata. Caulis 2-3 cm longus,

breviter pinnatus. Folia parum imbricata, late ovata, apice obtusa,

valde decurva. Cell. apice 17, reliquae 35 u, angulis medioque

distincte incrassatae. Lobulus major, folio vix 4plo brevior.,

oblongo-curvatus, carina valde arcuata, sinu levi excurrens, basi

duplo latior quam apice, ipso apice oblique truncatus. Amph.

remota, caule vix 3plo latiora, transverse inserta, subrotunda ad

'» bifida, sinu recto acuto, lobis latis acutis. Flores fem. pseudo-

laterales. Folia flor. spathulata, apice obtusa, decurva, lobulo ligulato,

longe soluto, subduplo breviore. Amph. flor. ovatum, bifidum,

lobis acutis. Androecia cauligena vel terminalia, bracteis paucijugis.

Hab. Sumatra (Kehding).

Cum H. norfolkiensi St. comparanda.

Hepaticarum species novae IN. 105

H. Sullivanti. St.n. sp. Dioica?’ major. Folia conferta, recte

patula, subrotunda, apice decurva, celluloso-crenulata, antice caulem

late superantia; lJobulus minimus cauli aequilatus, compresso-conicus,

carina adscendente, arcuata, apice triplo angustior quam basi, oblique

truncatus, angulo acuto. Amph. maxima, foliis aequilata, late reni-

formia, duplo latiora quam longa, anguste exciso inserta, apice late

retusa, integerrima. Per. anguste obconica, inferne cylindrica, medio

supero 5 plicata, plicis sensim sensimque inflatis, in apice perianthii

bullatis, erecto conniventibus, rostrum longe superantibus et omnino

obvelantibus. Folia flor. caulinis similia, magis crenulata, lobulo

magno, foliis suis breviore et vix dimidium angustiore, longe soluto,

margine libero late reflexo. Amph. flor. late obovatum leniter sed

distincte emarginatum, valde erenatum. Androecia ignota.

Hab. Venezuela (Fendler).

Nähert sich in Form des Perianths der H. auriculata Schiff.;

eine sehr schöne Art, welche ich nur aus einer Zeichnung Gottsche’s

kenne, weshalb ich keine vollständige Beschreibung geben kann.

H. Tonduzana. St. n. sp. Monoica, parva, subhyalina, fili-

cicola. Caulis 1—2 cm longus, multiramosus, rami numerosis flori-

bus utriusque sexus pinnati. Folia parum imbricata, recte patentia,

ovato-ligulata, antice caulem haud excedentia, apice truncato-rotun-

data. Cell. apice 17, medio 35, basi 25 X 40 « trigonis exiguis,

Lobulus parvus, caulis diametro duplo longior, compresso-conicus,

sub apice cönstrictus, apice ipso 3 plo angustiore quam basi, oblique

truncatus, angulo acuto. Amph. parva, caule 5 plo latiora, exciso

inserta, apice late lunatim emarginata, lobis ovatis acutis. Perian-

thıa in ramulis parvis pseudo-lateralia, medio constricta, medio infero

compresso ovata, supero profunde 5 plicata, plicis compressis alatım

ampliatis, apice umbonatıs, rostro parvo. Folia floralia minima,

foliis caulinis multoties minora, obovata vel ovato-oblonga, acuta vel

obtusa, lobulo anguste lanceolato, longe soluto. Amph. flor. sub-

circulare, minimum, ad medium bifidum, lobis late triangulatis ob-

tusis. Androecia parva, numerosissima (saepe ex angulis omnium

fere foliorum orta), bracteis laxe dispositis, 2—4 jugis, laxe reti-

culatis.

Hab. Costarica. Rio Naranjo (Tonduz No. 3077a).

Leptolejeunea. Spruce.

L. Balansae. St. n. sp. Dioica, parva, fusco-brunnea, folii-

cola. Caulis 10—15 mm longus, divaricatim ramosus. Folia parum

imbricata, oblique patula, oblique elliptica i. e. margine postico magis

arcuato, folia itaque versus apicem caulis nutantia, apice acuta vel

apiculata. Cell. apice 17, medio 17 X 25, basi 17 X 35». Ocellum

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Bin co

F. Stephani.

singulum in medio disci 25 X 50 «. Lobulus folio 4 plo

brevior, oblongo subrectangulatus, angustus, apice truncatus,

angulo obtuso, appresso, ceterum inflatus et plica obliqua per-

cursus, carina parum arcuata vel substricta. Amph. parva, disco

late obcuneato, apice truncato, cellulis magnis elongatis marginato,

angulis setigeris, setae lanceolatae, basi 2 cellulas latae, 2 cellulis

superpositis coronatae. Flores © pseudolaterales. Folia flor. cau-

linis multoties minora, integerrima oblongo-lanceolata, lobulo lineari

parum breviore. Amph. flor. basi connatum foliis suis aequilongum,

oblongum, usque ad basin fere bifidum, lobis lanceolatis, acutis.

Androecia ignota.

Hab. Tonkin (Balansa). Herb. Musei Paris.

A. L. foliicola amphigastriis facile distinguenda.

L. foliicola. St. n. sp. Dioica, parva, virescens, corticola,

late expansa. Caulis 10-15 mm longus, dense longeque pinnatus.

Folia remotiuscula oblique patula, integerrima, elliptica, apice late

acuminata, acuta vel apiculata. Cell. apice 17, medio 25, basi

17 X 35. Ocellum basale 25 X 50 u, reliqua ocella 2 vel 3 seriata,

minora. Lobulus folio triplo brevior, oblongo-subrectangulatus,

carina parum arcuata, apice recte truncatus, angulo obtuso vel sub-

dentato. Amph. parva, disco obcuneato, apice truncato ibidemque

duabus cellulis magnis marginato, anguli setigeri, setis tricellularibus

oblique divaricatis. Androecia pro planta maxima, cauligena,

bracteis 10—12 jugis, confertis, subaequaliter bilobis, lobis crenulatis'

obtuseque angulatis.

Hab. Insula Luzon (Micholitz).

L.foraminulosa. St. Dioica, exigua, stellatim expansa, foliicola.

Caulis 8—10 mm longus, effuse ramosus. F olia contigua, recte patula,

oblique ovata, plana, apice rotundata. Cell. apice 17, medio 25, basi

25x35. Ocellum basale 35 X 50, reliqua ocella 3—4 in folio dispersa,

minora. Lobulus parvus, plicaeformis, angulo dentiformi. Amph.

disco late triangulato, apice recte truncato ibidemque duabus cellulis

longissimis marginatus, utroque angulo setaceus, setis tres cellulas

longis, oblique divaricatis. Folia flor. caulinis aequimagna, e basi

cuneata oblonga, apice acuta, medio supero grosse lobato-dentata et

obtuse angulata, lobulo breviore, lanceolato vel oblongo, acuto,

similiter dentato. Amph. flor. foliis suis aequimagnum, utroque

latere alte coalitum, ad "/, bifidum, rima angusta, lobis acutis subin-

tegerrimis. Androecia ignota.

Hab. Surinam (Wullschlägel).

L. elliptica differt involucro integerrimo.

L. longicruris. St. Sterilis, parva, foliicola. Caulis divari-

catim ramosus, ramis breviter pinnulatis,. Folia parum imbricata,

Hepaticarum species novae IX. 107

recte patula, ovato-oblanga, apice obtusa, margine irregulariter dentata

dentibus magnis minutisque mixtis. Cellulae apice 8, medio 12,

basi 17 «, parietibus aequaliter incrassatis. Ocella 5-6 irregulariter

in folii disco dispersa. Lobulus magnus, folio vix 4 plo brevior,

oblongo-rectangulatus, carina substricta, apice recte truncatus vel

angulo dentiformi. Amph. transverse inserta, profundissime bifida,

laciniis longissimis, dimidium folii longitudinis attingentibus, late

divaricatis. Reliqua desunt.

Hab. Nova Guinea (Kärnbach No. 90 p. p.). Herb. Musei

Berol.

Cum Leptolej. denticulata comparanda.

L. rhombifolia. St. n. sp. Dioica, pusilla, foliicola.

Caulis divaricatim multiramosus. Folia contigua vel remotiuscula,

subrecte patula, planissima, oblongo-rhombea, apice obtusa. Cell.

apice 17, reliquae 17 X 25 «, angulis medioque parietum nodulose

incrassatae. Ocellum basale 35 X 50 «, ocella superiora 1—2, in

folii disco dispersa, minora. Lobulus oblongo-rectangulatus vel

plicaeformis, angulo longe striecteque dentato. Amph. profunde

bifida, laciniis setaceis latissime divaricatis. Flores fem, pseudo-

laterales. Folia flor. caulinis minora, profunde bifida, lobis sub-

aequimagnis, irregulariter dentatis. Amph. flor. alte coalitum, ligu-

latum, apice breviter bifidum dentatumque. Androecia ignota.

Hab. Nova Guinea (Kärnbach 1013. p. p.), Nova Caledonia

(Lenormand).

Foliis rhombiformibus facile cognoscenda.

L. Schiffneri. St. Dioica, parva, fusco-brunnea, foliicola.

Caulis 15—20 mm longus, irregulariter bipinnatis. Folia con-

ferta, oblique pantentia (angulo 45°), e basi angusta oblique

ovato - oblonga, late acuminata, acuta, medio supero crenato

denticulata. Cell. apice 17, medio 17 X 35, basi 25 X 50 a.

Ocellum basale 35 X 60 u, reliqua ocella 3—4 in linecam margine

postico folii approximatam seriata. Lobulus folio 3 plo brevior,

curvatim oblongus, inflatus, apice solum folio appressus, oblique

truncatus, angulo obtuso. Amphigastrii discus rectangulatus,

caule quadruplo latior, cellulis magnis marginatus, angulis superis

seta quadricellulari oblique patula armatis. Per. pseudolateralia,

ovato-obconica, inferne cylindrica, superne 5plicata, plicis in cornua

subrecte patula, conico acuminata abeuntibus; perianthii apex itaque

late truncatus rostro subnullo. Folia flor. caulinis aequilonga,

ligulata, acuta, grosse paucidentata, lobulo parum breviore, simili,

apice breviter bifido. Amph. flor. lobulis aequilongum, alte coalitum,

ligulatum, apice breviter bifidum, lobis acutis, extus dentatis,

Androecia cauligena spicata, bracteis 5—-10 jugis.

FERIEN N

108 F. Stephani.

Hab. Java (Warburg) vide: Schiffner, Hepat. exoticae in Nova

Acta Acad. Caes. Leop. Vol. LX. pag. 232. Tab. 3.

Cum Leptolej. truncatiloba. St. comparanda.

L. spicata. St.n. sp. Dioica, parva, in foliis longe lateque

expansa, flavescens. Caulis 15—20 mm longus, multiramosus, rami

pinnulis masculis numerosissimis instructi. Folia contigua, subrecte

patula, oblique subfalcatim ovata, obtusa, plana, cellulis conicis sub-

dentata. Cell. parvae, apice 10, medio 12, basi 17/20 «. parietibus

aequaliter incrassatis. Ocella basalia geminata, 25 X 35 u; Lobu-

lus ovalis, inflatus, foliis plus duplo brevior, carina arcuata, apice

excisus, hamatim grosse dentatus, ab apice lobuli margo folii abrupte

sinuatim adscendens. Amph. tenuissima, fere ad 2 lacinias setaceas

(6 cellulas longas) reducta, disco paucicellulari. Per. desunt. An-

droecia cauligena vel persaepe in pinnulis terminalia, pro planta

longissima, bracteis 12—15 jugis, confertis, bullatis, subaequaliter

bilobis, lobis acutis margine irregulariter angulatis vel subcrenulatis.

Hab. Tonkin (Balansa). Herb. Musei Paris,

L. unguiculata. St. n. sp. Dioica, pusilla, hyalina, musci-

cola. Caulis 10—15 mm longus, dense breviterque pinnatus. Folia

contigua vel parum imbricata, oblique patula, ovato-subfalcata, acuta

vel apiculata, margine antico cellulis conicis breviter dentata, postico

apiceque integerrima, dentem majorem tamen, lobulo approximatum,

gerentia. Cellulae apice 17, reliquae 17 X 35 u, basi geminatim,

ocellata. Ocella 25 X 50 u, 2 alia sub apice folii minora. Lobulus

magnus, inflatus, ovatus, apice angustato profunde excisus, hamatim

grosse dentatus, carina arcuata, levi sinu in folium excurrens. Amph.

bifida, lobis lanceolatis oblique divergentibus sistentia. Perianthia

et Androecia desunt; flores valde juveniles solum vidi.

Hab. Ecuador, inter Dicranolejeuneam crescens.

Foliorum denticulatione curiosissima distincta.

Lopholejeunea. Spruce.

L. Andersonii. St.n.sp. Monoica, rufo-badia, minor, mus-

cicola. Caulis 2—3 cm longus, pauciramosus. Folia imbricata,

recte patula, late breviterque ligulata, apice rotundata. Cell. apice 17,

medio 25, basi 25 X45 «. Lobulus ad plicam triangularem longe

attenuatam reductus. Amph. magna contigua, foliis parum minora,

optime reniformia, profunde exciso inserta alis ex parte liberis rotun-

datis. Perianthia late obcordata, compressa, margine grosse alato-

cristata, plicis posticis integerrimis, humilibus, longe decurrentibus.

Folia flor. unijuga, caulinis duplo angustiora sed aequilonga, superne

breviter dentata et angulata, perfecte elobulata. Amph. flor.

Hepaticarum species novae IX. 109

perianthio parum brevius, circulare, integerrimum. Androecia in

medio caulis, bracteis paucijugis.

Hab. Galapagos Insulac (Anderson).

L. borbonica. St.n. sp. Monoica, rufescens, major, corti-

cola. Caulis 3-4 cm longus, irregulariter multiramosus. Folia

imbricata, recte patula, late ovata, apice rotundata, decurva, valde

concava. Cell. apice 12, medio 25, basi 2545 «, angulis medioque

incrassatac. Lobulus magnus, folio 2 plo tantum brevior, ovatus,

turgidus, subsaccatus, carina arcuatim adscendens, sinu profundo ex-

eurrens, versus apicem attenuatus, convolutus, apice ideoque perfecte

occulto. Amph. pro planta parva, remota, sinuatim inserta, caule

3—4 plo latiora, reniformia. Per. compresso pyriformia, plicae posticae

humillimae, inermes, vel paucis spinis angustis armatae, laterales alte

alatae alae laceratac, dentibus plus minus magnis et profundis

armatae. Folia flor. intima caulinis subduplo latiora, similia, apice

denticulata, lobulo plus duplo breviore, ad plicam angustam linearem,

apice truncatam reducto. Amph. flor. intimum basi cuneatim an-

gustatum, ceterum subeirculare. Androecia in ramulis lateralibus

terminalıa, bracteis 5 jugis, contiguis, navicularıbus, lobis subaequi-

longis, apice parum solutis, obtusis.

Hab. Insulae Mascarenae (Lepervanche). Herb. Mus. Paris.

L. Finschiana. St.n. sp. Monoica, rufo-badia, minor, corti-

cola. Caulis 2-3 cm longus, longe ramosus. HFolia imbricata,

late ovata, subfalcata, apice rotundata. Cellulae parvae, apice 8,

medio 17, basi 25 a trigonis nullis. Lobulus folio duplo brevior,

carına substricta, oblique adscendens, sinu lato excurrens, basi in-

flatus, versus apicem angustatus, apice ipso oblique truncatus, angulo

acuto. Amph. foliis parum minora, imbricata, sinuatim inserta,

plana, circularia. Per. immersa, compressa, basi obcuneata, superne

semicircularia, carinae anguste alatae, alis longe grosseque spinosis.

Folia flor. caulinis multo majora subtriangularia, i. e. margine antico

valde arcuato, ceterum breviter dentato, postico stricto, apice obtuso

decurvo integerrimo. Lobulus parvus, ad plicam linearem reductus

vel omnino nullu. Amphig. flor. integerrimum, ce basi cuneata

subcirculare, foliis suis aequimagnum. Androecia in caule ramisve

terminalia, apice vegetativa, longissima, bracteis 10-15 jugis,

confertis.

Hab. Insula Jaluit (Dr. ©. Finsch No. 35). Herb. Musei Berol.

L. tecta (Mitt. St. (Phragmicoma, Mitten in Flora Viti). Dioica,

mediocris, rufobadia, muscicola. Caulis 5—-6 cm longus, vage multi-

ramosus. Folia imbricata, oblique patula, ligulata, apice rotundata.

Cell. apice 12, reliquae 25 «, trigonis subnullis. Lobulus oblongus,

parum inflatus, apice valde oblique truncatus, angulo acuto, carina

Dh Dr RE RE NE SUHEE. EISARE Se (OS. RD En

Br er.

110 F. Stephani.

leniter arcuata, sinu levi vel nullo excurrens,. Amph. transverse in-

serta, remotiuscula, subecircularia, caule 3 plo vel 4 plo latiora.

Perianthia in ramulis parvis terminalia, late compresso pyriformia,

plicis late alatis, posticis irregulariter lobatis, lateralibus subintegerrimis,

apice abrupte desinentibus, rostro itaque immerso inter excisuram

alarum. Folia floralia caulinis majora, similia, lobulo duplo breviore,

plicaeformi, angusto, apice truncato, angulo obtuso. Amph. flor. pro

planta parvum, subcirculare integerrimum. Androecia ignota.

Hab. Kermadec Insulae, Sunday Island (Herb. Jack.).

L. Knightii. St. n. sp. Monoica, rufescens, dense depresso

caespitosa, corticola.. Caulis 2—3 cm longus, multiramosus, ramis

divaricatis. Folia parum imbricata, subrecte patula, ovato-falcata,

_ apice rotundata, plana. Cell. apice 10, medio 17, basi 17 X 35 u,

trigonis nullis. Lobulus oblongus, oblique adscendens, carina stricta,

levi sinu in folium excurrens, 3plo longior quam latus, margine

supero carinae parallelo, apice oblique truncatus, angulo obtuso.

Amph. contigua, sinuatim inserta, caule triplo latiora, basi leniter

cuneata, ceterum fere circularia apice subtruncata. Per. subimmersa,

late obovata, compressa plicis posticis longe decurrentibus, omnibus

alte cristatis, cristis irregulariter grosseque lobato-dentatis. Fol.

flor. intima caulinis similia sed muldo majora, apice obtusa, decurva,

lobulus duplo brevior, ad plicam angustam, apice recte truncatam

reductus. Amph. flor. maximum, perianthio aequimagnum, inte-

gerrimum, ex angusta basi subceirculare. Androecia in medio

ramorum, bracteis 5 jugis.

Hab. Nova Zelandia (Knight, Kirk).

L. muensis. St. n. sp. Dioica, minor, rufescens, muscicola.

Caulis 1—2 cm longus, pauciramosus. Folia imbricata, recte

patula, late ovato-falcata, apice mucronata vel apiculata. Cell.

apice 12, subapicales 25, medio 35, basi 25 X 50 «, angulis medioque

incrassatis. Lobulus oblongus, curvatim adscendens, subsaccatus,

carina arcuata, apice abrupte et sinu profundo in folium excurrens,

inflatus, apice solum plano folioque appresso, oblique truncato, angulo

acuto. Amph. parva, caule 3plo latiora, remota, exciso inserta,

circularia vel subreniformia. Flores © terminales; folia flor. intima

ovato-oblonga, apice breviter acuminata, acuta, medio supero remote

ciliato-dentata. Lobulus plus 2 plo brevior, plicaeformis, planus, basi

angustus, versus apicem sensim ampliatus, ipso apice recte truncatus.

Amph. flor. intimum foliis suis brevius, basi cuneatim angustatus,

ceterum fere circulare, integerrimum vel apice paucidenticulatum.

Androecia ignota.

Hab. Nova Caledonia, in Mte. Mu (Balansa No. 15). Herb,

Mus. Paris,

Hepaticarum species novae IN, 111

L. nicobarica. St. n. sp. Dioica, mediocris, rufo-badia,

laxe caespitans. Caulis 4—5 cm longus, vage ramosus. Folia

parum imbricata, recte patula, late ovata, apice rotundata. Cell.

apice 17, medio 17 X 34, basi 25 X 40 u, parietibus validis.

Lobulus magnus, folio vix 3 plo brevior, oblongus, inferne valde

inflatus, superne abrupte angustatus apice 3 plo angustiore quam basi,

oblique truncatus, carina parum arcuata, levi sinu excurrens. Amph.

magna, imbricata, foliis duplo minora, profunde exciso inserta, reni-

formia, 2 plo latiora quam longa, in ramulis minora, magis rotundata.

Per. in ramulis parvis terminalia, late obovata, compressa, apice

rotundata, rostro subnullo, carinis posticis longe decurrentibus, omni-

bus irregulariter spinosis, spinis longis angustis, versus perianthii

apicem nutantibus. Folia flor. bijuga, intima elliptica, Splo vel

4 plo longiora quam lata, margine grosse dentata, dentibus remotius-

eulis, patulis brevibus; lobulo vix duplo breviore, lanceolato, parum

soluto, apice spinoso. Amph. flor. intimum spathulatum, magis

dentatum, foliis suis aequilongum. Androecia in medio ramorum,

bracteis 6—8 jugis.

Hab. Insulae Nicobarae (Kurz, Berkeley).

L.owahuensis. St.n.sp. Monoica fusco-rufa, major, robusta.

Caulis 2—3 cm longus, pauciramosus. Folia late ovata, imbricata,

recte patula, valde concava, apice obtusa, decurva. Cell. apice 17,

medio 25, basi 17 X 35 «, trigonis nullis. Lobulus parvus, folio

3plo brevior, turgidus, carina parum arcuata, levi sinu excurrens,

ovatus vel oblongus, apice convoluto-attenuatus vel oblique truncatus.

Amph. magna, contigua, foliis vix duplo minora, reniformia, exciso

inserta. Per. compresso-pyriformia, apice truncato-rotundata, plieis

irregulariter breviterque dentatis, posticis longe decurrentibus. Folia

flor. intima, caulinis similia, majora, lobulo duplo breviore, late

lineari, apice recte truncato. Amph. flor. intim. obovatum apice

recurvum, foliis suis aequimagnum. Androccia cauligena, bracteis

laxiusculis, 6—8 jugis.

Hab. Insula Owahu (Didrichsen).

Proxima L. javanicae quae differt amphigastrio caulino et

florali subcirculari.

L. rivularis. St.n.sp. Monoica, flavo-rufescens, mediocris,

corticola. Caulis 2—3 cm longus, vage multiramosus. Folia

imbricata, recte patula, ovata, obtusa, parum concava. Cell. apice 8,

medio 17 X 25, basi 25 X 35 «. Lobulus ad plicam parvam trian-

gularem reductus,. Amphig. parva, contigua, circularia, sinuatim

inserta, cauli 4 plo latiora. Perianthia late compresso -pyriformia,

apice truncata, plicis posticis longe decurrentibus, omnibus anguste

alatis, alae irregulariter spinoso incisae. Folia floralia intima

har ie a se mar, Jaurh Dissrielhahhnn Bin ar Tu LE Sue Kae ee bin situ ah a RE Ze, 4, Dani SB al aan Ah ac Dies ae a a a a

112 F. Stephani.

oblonga, acuminata, obtusa, medio supero denticulata: lobulus plus

2 plo brevior, anguste plicaeformis. Amph. flor. intimum late obo-

vatum, integerrimum, foliis suis aequilongum. Androecia magna,

in ramis terminalia, bracteis versus apicem sensim minoribus, fusi-

formia.

Hab. Brasilia, Apiahy (Puiggari), Sao Francisco (Ule).

L. sundaica. St. n. sp. Dioica, rufo-badia, major, laxe

caespitans. Caulis 3—4 cm longus, inaequaliter pauciramosus, ramis

longis simplicibus. Folia contigua, ipsa basi parum imbricata, recte

patula, falcato-ligulata, apice rotundata. Cell. apice 17, medio 20,

basi 25 X 35 a, trigonis nullis. Lobulus folio 4 plo brevior ovatus,

saccatus, apice angustato oblique, fere horizontaliter truncatus, carina

valde arcuata sinu subrecto in folium excurrente.e Amph. foliis

duplo minora, caule 5 plo latiora, sinuatim inserta, subcontigua, basi

cuneata, ceterum reniformia, integerrima. Perianthia in ramulis

parvis terminalia, compresso-pyriformia, carinis posticis longe decur-

rentibus, omnibus superne regulariter grosse spinosis, inferne inte-

gerrimis. Folia flor. bijuga, inferiora integerrima, ovata, lobulo

triplo breviore, plicam angustam rectangulatam formante, superiora

majora, irregulariter denticulata, lobulo duplo breviore, parum soluto,

plicam anguste lanceolatam acutam formante. Amph. flor. intim.

perianthio aequimagnum, obovato-oblongum, superne grosse spinosum.

Androccia parva, cauligena, longispica, bracteis 8—-10 jugis, parvis.

Hab. Insula Mindanao (Micholitz).

L. Wiltensii. St.n.sp. Dioica, minor, rufo-badia, muscicola.

Caulis 2-3 cm longus, paucipinnatus. Folia imbricata, recte

patula, late ovata, falcata, apice rotundata. Cell. marginales 8,

medio 17, basi 17X25 u, trigonis majusculis. Lobulus saccatus,

oblique adscendens, ad carinam basique valde inflatus, apice folio

appressus, planus, oblique et stricte truncatus, angulo recto acuto,

carina valde arcuata, sinu profundo in folium excurrens. Amph.

magna, imbricata, foliis vix minora, profunde exciso inserta, alis

accretis, reniformia, apice truncato-rotundata. Per. desunt. Folia

flor. intima caulinis majora, late obovata, superne irregulariter

spinosa, lobulo duplo breviore, ad plicam angustam reducto, apice

paueidentato. Amph. flor. intimum basi cuneatum, superne reni-

forme, foliis suis majus, margine similiter spinosum. Androecia

ignota.

Hab. Sumatra, Padang (Andree Wiltens.)

Mastigolejeunea. Spruce.

M. taitica. St. n. sp. Dioica, parva, viridis, dense depresso

caespitosa, corticola.. Caulis 15-20 mm longus, pauciramosus.

f: Begründet 1852 durch Dr. Rabenhorst ”

als

»Notizblatt für kryptogamische Studien.«

HEDWIGIA.

ia RER

Organ

für

Kryptogamenkunde

nebst

Repertorium für kryptog. Literatur. |

kKedıpirt

von

Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von

Paul Hennings und Dr. G. Lindau

in Berlin.

Band XXXV. * ae 1896. Zu Heft 3.

Inhalt: F. Stephani, Hepaticarum species novae IX (Schluss). — H. Schenck,

Brasilianische Pteridophyten (Anfang). — Repertorium No, 3.

Dresden,

Druck und Verlag von C. Heinrich.

Erscheint in zweimonatlichen Heften.

Abonnement für den Jahrgang 12 Mark

durch alle Buchhandlungen.

)

Ausgegeben am 25. Juni 1896.

An die Leser und Mitarbeiter der

„Hedwigia”.

Zusendungen und Anfragen redactioneller Art werden unter

der Adresse:

Prof. Dr. G. Hieronymus,

Berlin, Botanisches Museum, Grunewaldstrasse 6/7,

mit der Aufschrift

„Für die Redaction der Hedwigia“

erbeten,

Um eine möglichst vollständige Aufzählung der krypto-

gamischen Literatur und kurze Inhaltsangabe der wichtigeren Arbeiten

zu ermöglichen, werden die Verfasser, sowie die Herausgeber der

wissenschaftlichen Zeitschriften höflichst im eigenen Interesse er-

sucht, die Redaction durch Zusendung der Arbeiten oder Angabe

der Titel baldmöglichst nach dem Erscheinen zu benachrichtigen;

desgleichen sind kurz gehaltene Selbstreferate über den wichtigsten

Inhalt sehr erwünscht.

In Rücksicht auf den Gesammtumfang der Zeitschrift sollen die

einzelnen Abhandlungen die Länge von 3 Bogen im Allgemeinen

nicht überschreiten, desgleichen die einer Abhandlung bei-

zugebenden Tafeln nicht mehr als zwei betragen. Die Original-

zeichnungen für die Tafeln sind im Format 13 x 21 cm mit mög-

lichster Ausnutzung des Raumes und in guter Ausführung zu liefern,

auch sind die Manuscripte nur auf einer Seite zu beschreiben.

Die Autoren erhalten auf Wunsch 25 Sonderabzüge kostenlos,

doch werden solche in beliebiger Anzahl zum Selbstkostenpreis

geliefert.

C. Heinrich’s Verlag.

ie ad ae en. 3, he Be abe u in

Hepaticarum species novae IX. 113

Folia conferta, oblique arcuatim patula, in statu explanato oblonga,

ovata, apice plana obtusa, margine postico late convoluta, lobulo

incluso. Cell. apice 8, medio 8X17, basi 17X25 4, trigonis parvis.

Lobulus (in folio soluto tantum visibilis) ovatus, apice exciso longe

dentatus. Amph. imbricata, obcuneata, apice rotundato-truncata,

recurva. Per. pseudolateralia, obovato-oblonga, trigona, plica postica

altissima, apice rotundata, brevirostria. Folia flor. caulinis similia,

lobulo duplo breviore, late ovato, apice rotundato. Amph. flor.

foliis suis aequilongum, late ovatum, apice rotundatum, pro perianthii

receptione plicatum. Androecia ignota.

Hab. Tahiti (Vernier, Vesco), Viti (Graeffe).

Cum M. humili et ligulata comparanda.

Microlejeunea. Spruce.

M. acutifolia. St. n. sp. Dioica, parva, muscicola. Caulis

2--3 mm longus, irregulariter ramosus. Folia remotiuscula, e basi

saccata, erecta, caulı parallela, elliptica, margine repanda, parum

soluta, late acuminata, acuta vel apiculata. Cell. 12 «, trigonis

nullis. Lobulus late ovatus, inflatus, folio parum minor, apice

angustato excisus, angulo acuto, carina valde papulosa. Amph.

minima, cauli aequilata, ad medium bifida, laciniis 5 cellularibus

(2, 2, 1 superpositis), leniter divaricatis, sinu acuto. Flores fem.

pseudolaterales; folıa flor. caulinis multo majora, oblonga, acuta vel

obtusa, margine papulosa, lobulo nullo; amph. flor. obovatum, ad

medium bifidum, sinu acuto, laciniis lanceolatis, acutis papulosis.

Androecia ignota.

Hab. Insulae St. Vincent, Trinidad. Foliis apiculatis ab

omnibus adhuc conguitis distincta,; ceterum M. perpusillae Spruce

simillima.

M. atsuana. St. n. sp. Sterilis, pallide virens exigua. Folia

dissita, oblique patula, late ovata vel fere rotunda, apice obtusa.

Cell. 12 u. Incrassatio nulla. Lobulus normalis dimidium folii

superans, late ovatus, inflatus, apice late excisus, angulo obtuso,

saepe tamen duplo minor est, minus turgidus, apice oblique trun-

catus, cum plica attenuata longe in folium excurrens. Amph.

magna, obovato-oblonga, folii latitudini aequilonga ad '/; bifida, sinu

lato obtuso, laciniis porrectis obtusis, quadricellularibus (2, 1, 1 super-

positis). Reliqua desunt.

Hab. Nova Caledonia in Monte Atsu. (Saves 47). Amphig.

configuratione optime distincta.

M. catanduana. St.n sp. Monoica, flavo-virens, vel flave-

scens, minuta, longe lateque expansa, corticola. Folia remotiuscula,

oblique patula, ovata. Cell. 17 «, ipsa basi parum longiores. In-

Hedwigia Ba. XAXXV, 1890. 8

ae et wi ut Win nnd

114 F. Stephani.

crassatio nulla. Lobulus late ovatus, saccatus, folio triplo brevior,

carina valde arcuata, sinu profundo in folium excurrente, apice late

truncatus angulo acuto. Amph. caule aequilata usque ad basin fere

bifida, laciniis anguste lanceolatis, cauli curvatim approximatis, ubique

fere 2 cellulas latis. Per. pseudolateralia, pro planta maxima,

juniora obovata, adulta optime obconica, compressa, plicis posticis

late divergentibus, rostro majusculo. Fol. flor. caulinis similia,

lobulo lanceolato, aequilongo, longissime soluto. Amph. flor.

utroque latere connatum, oblongum, ad !/ bifidum, laciniis lanceo-

latis acutis, Androecia in caule ramisve terminalia, globosa,

bracteis 3 jugis.

Hab. Insula philippin. Catanduana (Micholitz), Nova Guinea

(Kärnbach).

M. crenulifolia. St. n. sp. Exigua, rufescens, muscicola.

Folia contigua vel parum imbricata, e basi saccata erecta vel parum

a caule divergentia, ovato-oblonga (plus duplo longiora quam lata)

apice obtusa, margine cellulis conico-prominulis serrata. Cell.

apice 12, reliquae 17 X 25 «, trigonis majusculis. Lobulus late

ovatus, inflatus, folio dimidium minor, apice angustato excisus angulo

obtuso, saepe tamen obsoletus. Amph. cauli aequilata, obcuneata,

lateribus strictis, apice plus minus emarginata interdum subtruncata,

laciniis itaque plus minus divaricatis, acutis. Reliqua desunt.

Hab. Trinidad (Crüger).

Pulcherrima species, foliis serratis cum nulla alia commutanda.

M. Cumingiana. St. n. sp. Rufescens, parva, muscicola.

Caulis 8—10 mm longus, divaricatim multiramosus. Folia dissita,

oblique patula, breviter ligulata. Cell. 8 «, parietibus validis.

Lobulus folio suo plus duplo brevior, ovato-oblongus, turgidus,

apice duplo angustiore excisus angulo hamatim dentato. Amph.

majuscula, caule duplo latiora, basi cuneatim angustata, ceterum sub-

rotunda, ad !/, bifida, sinu angustiore obtuso, laciniis latis, leniter

conniventibus acutis. Reliqua desunt.

Hab. Insulae philippinenses (Cuming).

Foliis ligulatis bene distincta.

M. grandistipula St. n. sp. Exigua, muscis consociata.

Caulis pinnatim longe ramosus. Folia remota, oblique patula,

cauli fere parallela, falcatim ovata, obtusa. Cell. 8X 12 u, trigonis

nullis. Lobulus ovatus, inflatus, magnus, folio vix duplo minor,

apice angustato excisus, angulo dentiformi. Amph. pro planta

magna, caule 3plo latiora, folii lobulo fere aequimagna, late ovata,

ad "/, bifida, rima angusta, lobis obtusis. Reliqua desunt.

Hab. Chile. Valdivia (Dr. Hahn).

Cum M. rotundistipula comparanda.

Hepaticarum species novae IX. 115

M. Mandoni St. n. sp. Dioica, hyalina, muscicola. Caulis

10—15 mm longus, vage longe ramosus. Folia contigua, e basi

erecta saccata, oblique patula, falcato-ovata, obtusa, Cell. apice 12,

medio 17, basi 17 X 25 «. Lobulus ovatus, turgidus folio dimidium

minor, apice valde angustatus, excisus, angulo dentiformi. Amph.

magna, caule 2 plo latiora, transverse inserta, subcircularia, ad ',

bifida, sinu obtuso, laciniis ovatis acutis, Flores fem. pseudo-

laterales. Folia flor. caulinis multo majora, obovata, rotundata,

lobulo parum breviore, oblongo, longe soluto, obtuso. Amph. flor.

foliis suis aequilongum, late ellipticum, ad "; bifidum, lobis latis,

acutis. Androecia ignota.

Hab. Madeira (Mandon).

Cum M. grandistipula comparanda, quae differt foliorum

cellulis multo minoribus; ceterum simillima.

M rotundistipula. St. n. sp. Pallida, parva, muscicola.

Caulis divaricatim multiramosus. Folia remotiuscula, e basi erecta

patula, falcato-ovata, acutiuscula. Cell. apice 8, medio 12, basi

12 X 17 u. Incrass. nulla. Lobulus folio duplo minor, inflatus,

curvatim oblongus, carina valde arcuata, papulosa, apice 3 plo an-

gustiore recte truncatus sub apice constrictus. Amph. pro planta

maxima, caule fere 3 plo latiora, basi transverse inserta, ceterum cir-

cularia, apice ad !/; excisa, lobis latis, acutis. Reliqua desunt.

Hab. Japonia (Miyoshi 22. p. p.).

Amphig. magnis, rotundis breviter incisis facile cognoscenda.

M. samoana. St. n. sp. Exigua, rufescens, muscicola.

Caulis 2—3 mm longus. Folia dissita, e basi saccata, erecta, cauli

subparallela, late oblonga, apice obtusa vel rotundata, margine cellulis

alte prominulis optime crenulata. Cell. apice 8, medio 17, basi

17 X 25 u parietibus validis. Lobulus folio suo duplo minor,

saccatus, ovatus, apice late excisus, angulo dentiformi. Amph.

e basi angusta obcuneataque divaricatim bifida, laciniis lanceolatis,

7 cellularibus (3, 2, 1, 1 superpositis) leniter conniventibus, excisura

late lunata. Reliqua desunt. Species distinctissima.

Hab. Samoa (Dr. Graeffe).

M. subulistipa. St.n.sp. Pallida, exigua muscicola. Caulis

3—4 mm longus, parum ramosus. Folia dissita, e basi saccata

erecta cauli parallela, late obovata vel rotundata. Cell. apice 8,

reliquae 12 «. Lobulus ovatus turgidus, folii duplo minor, apice

duplo angustiore excisus, angulo longe dentatus, ad carinam papu-

losus.. Amph. magna, lobulo majora cauleque triplo latiora, ad ?);

lunatim emarginata, disco integro 4 cellulas alto, laciniis lanceolatis

g%*

116 F. Stephani.

vel subulatis, leniter conniventibus, circumscriptione itaque fere

rotunda. Reliqua desunt.

Hab. Brasilia, Sta. Catharina (Ule n. 71). Amphigastriis

magnis profunde excisis distinguenda.

Odontolejeunea.

O. mimula. St. n. sp. Dioica, mediocris, pallide-virens,

foliicola. Caulis 2—3 cm longus, multiramosus. Folia conferta,

oblique patula, valde concava, decurva, late ovato-falcata, acuta,

margine antico apiceque regulariter spinosa, spinis unicellularibus,

remotiusculis, interdum valde abbreviatis, in foliis adultis saepe

obscuris, margine postico subintegerrimo. Cellulae apice 25,

basi 25 X 35 «, trigonis nullis. Lobulus magnus, folio vix triplo

brevior, valde inflatus, oblongus, apice convolutus, in adspectu itaque

attenuatus, carina arcuata, apice abrupte breviterque sinuata. Amph.

magna, caule 3plo vel 4 plo latiora, circumscriptione fere circularia,

ad !Y, vel ultra biloba, sinu acuto subrecto, laciniis acuminatis,

acutis, ubique grosse dentata (etiam in sinu apicali). Per. pseudo-

lateralia, inferne compresso-obovata, tertio supero leniter amplıata,

apice profunde incisa, quasi bialata, alis falcato-divergentibus, calycem

mimulorum fingentibus, acutis, spinosis, rostro parvo immerso,

Folia flor. caulinis similia, lobulo parvo oblongo, obtuso, dentato.

Amph. flor. foliis suis subaequimagnum obovattm, ad ', bilobum,

lobis latis acutis dentatis. Androecia ignota

Hab. Guadeloupe (l’Herminier).

Configuratione perianthii distinctissima.

OÖ. paulina. St. n. sp. Monoica, flavescens, mediocris.

Caulis 2 cm longus, regulariter pinnatus, pinnulis longiusculis.

Folia imbricata, oblique patula, ovato-rotundata, apice obtusa,

remote paucidenticulata, dentibus saepe solum angulatim promi-

nentibus. Cell. ubique aequales, 25 X 35 «, trigonis minutis,

lobulus parvus, folio triplo brevior, oblongus, inflatus, apice plano-

appresso, carina arcuata, levi sinu excurrens, apice recte truncatus,

angulo acuto. Amph. parva, caule subtriplo latiora, subcircularia,

exciso-inserta, integerrima. Per. pseudolateralia compresso-obovata,

postice convexa, margine anguste alata, grosse paucidentata; folia

flor. caulinis similia, acuta, altero lobulo inflato masculo, altero

lobulato; amph. flor. foliis suis aequilongum, subeirculare, medio

alte gibbosum. Androecia hypogyna, in lobulis foliorum magis

inflatis, ceterum haud mutatis.

Hab. Brasilia, Apiahy (Puiggari).

Bei dieser Gelegenheit möchte ich erwähnen, dass OÖ. stachy-

clada, Spruce durchaus identisch ist mit OÖ. convexistipa.

Hepaticarum species novae IX. 117

OÖ. subbifida. St. n. sp. Sterilis, robusta, fusca. Caulis

3—4 cm longus, ramulis brevibus numerosis. Folia valde conferta,

recte patula, falcato-ovata, acuta vel obtusiuscula, concava, apice

decurva, integerrima, juniora margine antico et circum apicem breviter

dentata. Cell. apice 25, medio 25X35, bası 25X 50 u, parietibus sub-

aequaliter incrassatis; lobulus magnus folio vix duplo brevior,

oblongo fusiformis, cum plica longe attenuata excurrens, inflatus,

carina substricta sub apice lobuli abrupte sinuata. Amph. pro

planta parva, caule tamen 5plo latiora, exciso-inserta, reniformia,

apice breviter emarginato-biloba, lobis obtusis. Reliqua desunt.

Hab. Insula St. Vincent.

Der Form, Zähnelung und Textur der Blätter nach gehört die

Pflanze, welche sonst ganz die Grösse und Farbe, auch den Habitus

einer Platylejeunea hat, sicher zu Odontolejeunea, deren grösste und

stattlichste Art sie ist.

OÖ. tocoriensis. St. n. sp. Sterilis, parva, fusco-brunnea,

foliicola.. Caulis 2—3 cm longus, parum ramosus. Folia vix

imbricata, oblique patula, late ovata, grosse 8—9 dentata, dentibus

subaequimagnis, 4 cell. longis, 2 cell. latis. Cell. 25 «, ıpsa basi

25 X 35 «, angulis medioque parum incrassatae. Lobulus majus-

culus, caulis diametro duplo longior, subrectangulatus, carına parum

arcuata, margine supero parallela, apice recte truncatus, ceterum valde

inflatus, angulo solum plano folioque appresso. Amph. parva, caule

duplo latiora, circularia vel reniformia, hastatim excisa, alis liberis

caulem versus anguste revolutis. Reliqua desunt.

Hab. Costarica (Tonduz n. 3077b p. p.).

Proxima OÖ. decemdentatae, quae differt foliis margine postico

integerrimo, antico solum dentato, amphigastriis diversis.

Platylejeunea Spruce.

P. Kroneana. St. n. sp. Dioica. Minor, gracilis, olivacea,

laxe caespitans. Caulis 6—8 cm longus, vage multiramosus, ramis

saepe elongatis, remote pinnulatis. Folia conferta, oblique patula,

breviter ligulata i. e. marginibus subparallelis apice rotundata.

Cell. apice 17, medio 25, basi 25 X 35 «. Lobulus parvus, caulis

diametro subduplo angustior, ad instar auricularum Frullaniae cucul-

latim convolutus, erectus, basi in plicam parvam attenuatam excurrens,

carina conjunctionis sinuata (haud convexo prominente), Amph.

maxima, foliis submajora, reniformia, ad medium exciso inserta, basi

in alas angustas decurrentes abrupte attenuata. Perianthia late

compresso-obovata, postice plicam latam convexam laevem gerentia,

margine anguste cristata, cristis profunde irregulariterque grosse

lobato-dentatis. Folia flor. perianthio aequilonga, aequaliter biloba,

118 F. Stephani.

lobis rotundatis. Amph. flor. ligulatum, foliis suis aequilongum,

uno latere breviter coalitum. Androecia ignota.

Hab. Brasilia, Sta. Catharina (Krone).

Quoad formam foliorum P. setosae maxime affınis, perianthio

toto coelo diversa.

Prionolejeunea Spruce.

P. angulistipa. St.n.sp. Monoica parva, flavescens, musci-

cola. Cauli 15—20 mm longus, pinnulis brevibus. Folia parum

imbricata, recte patula, ovato-subfalcata, apiculata, margine cellulis

conico-prominulis denticulata. Cell. apice 12, medio 17, basi 17 X35 u,

papulosae, trigonis majusculis, acuminatis. Lobulus magnus, folio

vix duplo brevior, curvatim oblongus, sub apice constrictus, ipso

apice truncatus, obtusangulus, carina valde arcuata, sinu profundo

in folium excurrens. Amph. minima, cauli aequilata, transverse

inserta, basi obcuneata, utroque latere distincte angulata, ad ?/; bifida,

laciniis breviter acuminatis, porrectis. Perianthia in ramulis parvis

terminalia, anguste compresso-obconica, apice truncato-rotundata,

irregulariter breviterque lacinulata, fere fimbriata. Folia flor.

caulinis minora, similia, lobulo magno, duplo breviore, angusto,

obtuso. Amph. flor. obovatum, ad */, bifidum, rima angusta laciniis

obtusiusculis. Androecia parva, cauligena, subglobosa, bracteis

2—3 jugis.

Hab. Martinique (Perrottet), India occidentalis. (Herb.

Mus. Vindob. [Herb. Lindenberg] No. 6277 sub nomine L. denti-

culatae.)

P. bicristata. St. n. sp. Dioica, mediocris, flavescens,

muscicola.. Caulis 3—4 cm longus, vage pauciramosus. Folia

parum imbricata subrecte patula, ovata, apiculata, margine cellulis

irregulariter prominulis repanda. Cellulae apice 12, medio 17,

basi 17 X 35 u, parietibus crassis Lobulus parvus, caulis diametro

parum longior, ovatus, apice truncatus, obtusangulus, carina arcuata,

sinu profundo in folium excurrens. Amph. parva, caule vix duplo

latiora, sinuatim inserta, subrotunda, ad '/, biloba, lobis latis obtusis,

sinu acuto subrecto. Perianthia in ramulis parvis terminalia,

obovata, compressa, medio supero anguste alata, alis grosse denseque

laciniatis, biseriatis vel conduplicatis (series antica a postica libera)

margine irregulariter dentatis et lacinulatis. Folia flor. caulinis

multo minora, similia, lobulo parvo, lanceolato. Amph. flor. parvum,

foliis suis minus, oblongum, ad !J; bifidum, rima angusta, lobis

acuminatis acutis. Androecia ignota.

Hab. Guadeloupe (l’Herminier).

Perianthio bicristato ab omnibus distincta.

Hepaticarum species novae IX. 119

P. prionodes. St. n. sp. Dioica, major, flavescens, musci-

cola. Caulis 3-4 cm longus, remote breviterque pinnatus. Folia

parum imbricata, recte patula, ovato-oblonga, longe acuminata, acu-

mine valde decurvo, margine cellulis alte conicis profunde solutis

denticulata. Cell. apice 12, medio 17, basi 17 X 25 «, angulis

medioque incrassatae, cuticula laevis. Lobulus parvus, caulis dia-

metro parum longior, oblongus, 3plo longior quam latus, sub apice

constrietus, apice ipso recte truncatus, acutangulus, carina leniter

arcuata, sinu profundo in folium excurrens. Amph. magna, con-

tigua, transverse inserta, caule 4plo latiora, subrotunda, ad ?, biloba,

sinu obtuso, angustiusculo, lobis porrectis acuminatis acutis. Per.

in ramulis brevibus terminalia, compresso-obconica, apice truncata,

medio supero margine irregulariter breviterque lacinulata. Folia flor.

caulinis multo minora, similia, lobulo duplo breviore, ligulato vel

lineari, longius soluto. Amph. flor. foliis suis majus, obovatum,

ad ! bifidum, lobis latis acutis, denticulatis. Androecia ignota.

Hab. Guadeloupe (l’'Herminier). Brasilia, Sao Francisco

(Ule 47 p. p.).

Cum Pr. mucronata Sande-Lac. comparanda.

P. subobscura. Spruce ms. (in Hep. Spruc. exsicc.). Monoica,

parva, obscure viridis, laxe caespitans, corticola et muscicola. Cau-

lis 10—15 mm longus, vage ramosus. Folia parum imbricata, late

ovata, apice rotundata, cellulis alte conieis denticulata. Cell. apice 8,

medio 17, basi 17 X 25 u, trigonis minutis. Lobulus magnus, folio

plus duplo brevior, curvatim adscendens, valde inflatus, oblongus,

apice truncato, angulo dentiformi, sub apice leniter constrictus, carina

valde arcuata, sinu profundo in folium excurrente. Amph. parva, caule

duplo latiora, transverse inserta, subrotunda, ad medium bifida, sinu

recto acuto, laciniis latis, leniter acuminatis acutis. Per. in ramulis

parvis terminalia, compresso obconica, postice convexa margine

irregulariter dentatis vel breviter laceratis, rostro subnullo. Folia

flor. caulinis minora, similia, lobulo lanceolato obtuso, parum soluto.

Amph. flor. obovato-oblongum, ad !/; bifidum, lobis obtusis. An-

droecia parva cauligena, bracteis 2—3 jugis, confertis,

Hab. Brasilia. Para (Spruce).

Proxima P. microdonti, quae differtt amph. minus profunde

incisis, obtuse lobulatis, foliorum cellulis marginalibus majoribus,

minus longe prominentibus.

P. validiuscula. Spruce ms. (Hep. Spruce. Exsicc.). Monoica,

parva, olivacea, laxe caespitans.. Caulis 2—3 cm longus, varie

longeque ramosus. Folia conferta, subrecte patula, ovato-falcata

i. e. margine antico valde arcuato, postico substricto, apice obtusa,

cellulis marginalibus conicis contiguis irregulariter serrata. Cell.

120 F, Stephani.

marginales 8, medianae 12 X 17, basales 17 X 34 u, trigonis nulllis.

Lobulus majusculus, folio 3plo brevior, oblique adscendens, ovato-

oblongus, apice excisulus, obtusangulus, carina parum arcuata levi

sinu excurrens. Amph. parva, caule duplo latiora, transverse in-

serta, subrotunda, integerrima, ad medium bifida, sinu recto acuto,

lobis acutis. Per. late compresso obconica, basi fere stipitata, apice

late rotundata, medio supero alte cristata, crista profunde irregulariter-

que lacerata. Fol. flor. caulinis multo minora, similia, lobulo parvo

lanceolato, longe accreto. Amph. flor. oblongum, ad ",; bifidum,

sinu angusto, lobis acutis. Androecia parva, cauligena, bracteis

3—4 jugis, confertis.

Hab. Panure (flumen Uaupes) leg. Spruce. Cristis giganteis

maxime laceratis distincta.

Von den sonst noch in den Exsiccaten ausgegebenen Arten

unserer Gattung ist P. leptocardia Spruce zu annulliren, weil sie

mit Lej. accedens G. identisch ist. Auch die von Husnot aus-

gegebene Lej. Husnoti G. ms. ist zu cassiren, da sie von Lej.

guadalupensis Ldg. nicht verschieden ist.

Ptycholejeunea Spruce.

P. birmensis. St.n.sp. Monoica, minor, rufescens, corticola.

Caulis 5-6 cm longus, irregulariter pinnatus. Folia conferta,

recte patula, ovata, acuminata, acuta apice paucidentata, margine

antico anguste recurva, postico incurva. Cell. margin. 8, medio

10 X 20, basi 25 a, angulis medioque incrassatae. Lobulus parvus,

ovatus, truncatus, acutangulus, saepe in folii margine postico

recurvoque occultus. Amph. magna, imbricata, exciso inserta, alis

rotundatis liberis, apice 12 dentata, dentibus brevibus regularibus.

Per. pseudolateralia, oblonga, triplo longiora quam lata, profunde

10 plicata, rostro magno. Folia flor. caulinis similia, lobulus in

folii margine postico late recurvo occultus. Amph. flor. ellipticum,

medio supero irregulariter grosseque dentatum. Androec. in ramis

terminalia, apice saepe vegetativa, bracteis confertis 4—5 jugis.

Hab. Birma (Micholitz).

Cum P. Nietneri St. comparanda.

P. irawaddensis. St. n sp. Monoica, minor, fusco-olivacea,

pendula. Caulis 6-7 cm longus, remote breviterque pinnatus,

Folia parum imbricata, oblique et stricte patula, ovato-ligulata,

marginibus parallelis strictis, apice obtusa, integerrima. Lobulus

parvus plicaeformis, in folii margine postico revolutoque immersus.

Amph. imbricata, quadrato-rotunda, marginibus lateralibus recurvis,

basi breviter auriculata, ceterum transverse angusteque inserta. Per.

pseudolateralia, juniora obconico-pyriformia, adulta duplo longiora,

Hepaticarum species novae IX. 121

compresso-clavata, profunde 10 plicata, rostro magno. Folia flor.

caulinis similia, multo majora, lobulo subnullo.. Amph. flor. late

ovatum, foliis suis subaequimagnum, basi caudatum, apice leniter

emarginatum, angulis obtusis. Androecia in medio ramorum,

parva, fusiformia, bracteis 4—5 ju

Hab. Birma. (Sulp. Kurz.)

Folis integerrimis et amphig. auritis facile distinguenda.

gis, confertis.

P. Nietneri. St. n. sp. Monoica, magna, robusta, fusco-

rufa, pendula. Caulis 10—12 cm longus, longe pinnatus, pinnis

primariis saepe celongatis iterum pinnatis, flabellam expansam

formantibus. Folia parum imbricata, oblique vel subrecte patula,

oblique ovata, acuta, versus apicem grosse dentata, margine antico

anguste recurvo. Cellulae 12 X 25, basi 17 X 35 u, angulis medioque

valde incrassatae. Lobulus parvus, oblongus, apice truncatus,

acutangulus, inflatus, angulo solum plano, dein plica obliqua percursus,

carina substricta stricteque in folium excurrens.. Amph. magna,

subimbricata, basi angustata, subrotunda, superne grosse dentata,

marginibus basalibus recurvis. Per. pseudolateralia, pyriformia,

rostro brevi, decemplicata, plicis angustis, inflatis, profundis. Folıa

flor. caulinis minora, similia, integerrima, lobulo plicaeformi, duplo

breviore. Amph. flor. late ovatum, apice retusulum, marginibus

recurvis, integerrimis. Androecia in medio ramorum superiorum,

bracteis 10—12 jugis, valde confertis, lobo postico multo minore,

longe acuminato, antico acuto denticulato.

Hab. Ceylon (Nietner) Herb. Jack.

P. Perrottetii. St.n.sp. Dioica? major, fusco-rufa, pendula.

Caulis 10—12 cm longus, irregulariter pinnatus. Folia conferta,

oblique patula, ovato-oblonga, apice grosse dentata, dente mediano

majore, cuspidata, margine postico anguste recurva. Cell. I X20 u,

basi 17 X 35 «4, angulis medioque valde incrassatae. Lobulus parvus,

caulis diametro 2plo longior, carina stricta strieteque excurrente,

valde inflatus, angulo solum plano, plica oblıqua itaque percursus.

Amph. magna, imbricata, subrotunda, medio supero grosse spinosa,

basi transverse angusteque inserta, alis parvis rotundatis liberis. Per.

optime pyriformia apice rotundata, brevirostria, inflato decemplicata.

Folia flor. caulinis similia, parum majora, lobulo duplo breviore,

plicaeformi. Amph. flor. late ovatum, foliis suis majus, superne

grosse dentatum, basi marginibus recurvatis angustatum. Androecia

ignota,

Hab. India orientalis, Nilgherry Ms. (Perrottet).

Sub nomine Ptych. striati in Herbario Lindenbergi; differt

nostra lobulo multo majore, foliis grosse dentatis cuspidatis et peri-

anthio e basi substipitata late pyriformi.

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122 F. Stephani.

P. pyriformis. St. n. sp. Monoica, minor, fuscescens, pen-

dula. Caulis 5—6 cm longus, regulariter pinnatus, pinnulis superne

elongatis iteratim pinnulatis. Folia imbricata, oblique stricteque

patula, marginibus parallelis, postico anguste recurvo, apice abrupte

angustata, acuta vel apiculata subintegerrima. Cell. apice 8, medio

12 X 17, basi 17 X 35 «. Lobulus parvus cauli aequilatus, cucul-

latim-globosus. Amph. magna, contigua, basi exciso inserta, alae

liberae, marginibus recurvis subhastatae, ceterum integerrima. Per.

pseudolateralia, parva, optime pyriformia, superne inflata, 10 plicata,

plicae humillimae, in sectione transversali decem angulis solum

notatae; rostro magno. Folia flor. caulinis similia, lobulo plicae-

formi 2plo breviore. Amph. flor. late ovatum, apice emarginato-

bilobum, lobis rotundatis, marginibus lateralibus valde recurvis.

Androecia in medio ramorum, superiorum bene definita, bracteis

confertis 10 jugis, conchaeformibus, apice breviter bilobis, lobo antico

obtuso, postico breviore acuto,

Hab. Yomah, Pegu (Sulp. Kurz 3013).

Cum P. Perrottetii comparanda,

P. recondita. St. n. sp. Monoica, viridis, robusta, longe

lateque expansa, corticola. Caulis 3—4 cm longus, e caudice

repente multiramosus, ramis repentibus paucipinnatis, maxime intri-

catis. Folia conferta, late falcato-ovata, apice rotundata, margine

antico valde arcuato, postico sinuato, anguste recurvo. Cellulae

12 X 25 u, basi 17 X 35 «, angulis medioque incrassatae. Lobulus

magnus, folio duplo brevior, late ovatus, oblique adscendens, valde

inflatus, apice angustato oblique truncatus, in plicam marginis ex-

currens. Amph. magna caule 5plo latiora, exciso inserta, basi

cuneatim angustata, ceterum reniformia, duplo latiora quam longa,

apice truncato rotundata. Perianthia pseudolateralia, obovato tri-

quetra, 10 plicata, apice truncata, plicis inflatis prominentibus umbo-

nata, rostro brevi. Folia flor. caulinis minora, similia, subaequaliter

biloba, lobulo solum angustiore parum soluto. Amph. flor. foliis

suis majus, late ovatum. Androecia maxima, in ramis terminalia,

bracteis 17— 20 jugis, magnis, confertissimis, subaequaliter bilobis,

lobo antico e basi saccata squarrose patulo, postico appresso,

Hab. Insula Luzon (Micholitz).

Im Habitus und der Verzweigung hat diese Pflanze mit Ptycho-

lejeunea nichts gemein; das Perianth ist aber durchaus dasselbe und

entsteht aus der Verwandlung eines 3kantigen oder 3flügeligen

Kelches (durch Hinzutritt je 2 accessorischer Falten an jedem

Flügel) in einen 9faltigen Kelch, wozu meist eine mediane Falte

an dessen Dorsalseite tritt, was dann die gewöhnliche Anzahl von 10

Hepaticarum species novae IX. 123

ergiebt. Mit Brachiolejeunea hat die Pflanze in ihren vegetativen

Örganen auch nichts gemein, so dass ich sie vorläufig hier unter-

gebracht habe.

Peltolejeunea Spruce.

P. galapagona. St. n. sp. Sterilis, rufescens, gracilis, musci-

cola. Caulis 5—6 cm longus, pauciramosus, filiformis. Folia

remotiuscula, oblique patentia, ovata, oblonga, apice longius acuminata,

acuta, margine postico acumineque late decurvo. Cell. marg. 12,

medio 17 X 25, basi 17 X 35 u trigonis minutis. Lobulus turgidus,

ovato-oblongus, carina parum arcuata, medio supero valde angustatus,

apice recte truncatus, acutangulus. Amph. parva, caule 3 plo latiora,

dissita, exciso-inserta, alis accretis, obovato-rotundata, integerrima.

Reliqua desunt.

Insulae Galapagos, Charles Island (Anderson).

Obgleich die Pflanze steril und nur in wenigen Stämmchen ge-

funden worden ist, führe ich sie hier doch auf, weil es von grossem

pflanzengeographischen Interesse ist, von einer so isolirten Inselgruppe

Alles kennen zu lernen, was zum Vergleich mit benachbarten Floren-

gebieten dienen kann.

P. rotundistipula. St.n.sp. Sterilis, gracilis, rufescens, pen-

dula vel museicola. Caulis 4—-6 cm longus, longe pauciramosus,

ramis remote breviterque pinnulatis, pinnulis, recte patentibus.

Folia imbricata, oblique patula, cordiformia, apice late acuminata,

acuta, margine postico anguste recurvo. Cell. marg. 8, med. 12 X 20,

basi 25 X 25 u, trigonis parvis. Lobulus oblique adscendens,

ovatus, carina leniter arcuata, sinu amplo excurrente, apice 2 plo

angustiore oblique truncatus, acutangulus sub apice parum constric-

tus. Amph. magna, foliis parum minora, ıimbricata, ad !, exciso

inserta, alis accretis, subcircularia, apice tamen parum angustata,

rotundata, integerrima. Reliqua desunt.

Hab. Ecuador (Herb. Renauld).

P. ovalis differt foliis et amphig. multo angustioribus.

Pyenolejeunea Spruce.

P. angulistipa. St. n. sp. Sterilis, mediocris fusco-rufescens,

muscicola. Caulis 20—25 mm longus, dense regulariterque pinnatius,

pinnulis longiusculis. Folia imbricata, oblique patula, magna, late

falcato-ovata, margine antico valde arcuato, apice obtusa, anguste

decurva, valde concava. Lobulus folio parum brevior (vix 3)

strictus, inflatus, angustus, 4 plo longior quam latus, carina parum

arcuata, papulosa, in folii marginem recte continua, apice planus

oblique truncatus, grosse et argute bispinosus,. Amph. magna con-

en ii A

a Ah „u 2 er

2 ai 4 ) A 5

124 F. Stephani.

tinua, sinuatim inserta, longe obcuneata, ad '/; bifida, sinu subrecto,

acuto, lobis, anguste triangulatis, obtusis, extus ad basin utroque

latere angulatis vel dente obtuso armatis. Reliqua desunt.

Hab. Perak (L. Wray 1563 pp.).

P. badia. St. n. sp. Dioica, badia, major, corticola. Caulis

2—3 cm longus, dense pinnatus, pinnulis aequimagnis, brevibus.

Folia conferta, recte patula, oblongo-subfalcata, margine postico

substricto, apice truncato-rotundata, plana. Cell. 25 u, basi 35 ,

valde regulares, parietibus aequaliter incrassatis. Lobulus parvus,

caulis diametro duplo longior, recte patulus, rectangulatus, obtusan-

gulus, carina stricta abrupte sinuatim excurrente. Amph. magna,

contigua, caule 8 plo latiora, sinuatim inserta, cordiformia, i. e. basi

rotundatim alata, superne rotundato-angustata, apice ad "/, incisa,

sinu subrecto obtuso, lobis late triangulatis acutis. Flores Q pseudo-

laterales; folia flor. caulinis angustiora, erecta, falcato spathulata,

apice angulata vel repanda, saepe inaequales, lobulo magno parum

breviore lanceolato acuto, longe soluto. Amph. flor. cum lobulis

alte coalitum, in parte libera late ovatum, ad !; bifidum, sinu recto

lobis acuminatis acutis. Androecia ignota.

Hab. Nova Guinea (Kärnbach 1002. Herb. Mus. Berol.).

Das hoch hinauf verwachsene Involucrum bildet einen engen

tiefen Trichter, nur der obere Theil der Blätter neigt etwas nach

aussen.

P. bancana. St. n. sp. Monoica, majuscula, fusco-rufa, laxe

intricata. Caulis 3—4 cm longus, crassus, vage ramosus. Folia

conferta, recte patula, ovato-triangularia, leniter falcata. margine

antico valde arcuato, postico substricto, apice rotundata. Cell. api-

cales 17, reliquae 25 « trigonis magnis acutis; ocella 4—5 ad basin

folii aggregata 25 X 50 «. Lobulus folio plus duplo brevior, recte

patulus, oblongus, carina leniter arcuata, sinuatim excurrente apice

2 plo angustiore, oblique truncatus, acutangulus (dente occulto).

Amph. majuscula contigua, transverse inserta, subrotunda vel rotun-

dato-reniformia ad ', bifida, sinu recto acuto, lobis triangulatis acutis.

Per. pseudolateralia, magna, compresso-obovata, apice subtruncata,

suberostria, 5 plicata, plicis posticis humilibus, divaricatim decurren-

tibus. Folia flor. caulinis parum majora, patula, leniter falcata,

apice rotundata, lobulo subtriplo breviore, ligulato, longe soluto,

repando. Amph. flor. e basi angusta, obconica, apice truncato-

rotundata rima angusta brevissime bifida. lobis acutis. Androecia

magna, saepe perianthio approximata, bracteis usque ad 10 jugis,

confertis,

Hab. Insula Banca (Teysmann). Java (Dr. G. Karsten).

er „or a a a a a er u ze ne BR “2 ie 2 u a

Hepaticarum species novae IX. 125

P. decurviloba. St. n. sp. Dioica, major, rufescens vel

badia, intricatim caespitosa. Caulis 3—4 cm longus, irregulariter

longiramosus, crassus. Folia conferta, recte patula, late ligulata,

apice rotundata, anguste decurva. Cell. apice 17, medio 25, basi

25 X 35 u, dorso papulosae, trigonis magnis, acutis. Lobulus parvus,

caulis diametro vix aequilatus, e basi latiore decurvus, i. e. versus

basin caulis spectans, carina itaque sinuata; apice oblique truncatus

obtusangulus. Amphig. magna, imbricata, profunde exciso-inserta,

late reniformi-recetangulata, duplo latiora quam lata, marginibus late-

ralibus anguste recurvis (sensu marginis folıorum) apice late truncata,

rıma angusta brevissime incisa, lobis apiculatis vix prominentibus.

Perianthia magna, pscudolateralia, pyriformia, apice truncato-

rotundata, rostro subnullo, quinqueplicata, plicis postieis humilibus,

breviter divaricatis. Folıa flor. caulinıs majora, elliptica, concava,

apice decurva, lobulo lanceolato, duplo breviore, usque ad basin fere

soluto, acuto. Amph. flor. late ovatum, ad !j; bifidum, rima angusta,

lobis late triangulatis obtusis. Androecia in medio caulis, bracteis

5—6 jugis, laxis, cucullatis subnigris.

Hab. Ecuador (Wallis), Trinidad (Crüger).

P. Galatheae. St. n. sp. Dioica, major, rufescens, intricatim

caespitosa. Caulis 3 -4 cm longus, vage multiramosus, ramis lon-

gioribus minoribus mixtis, parvis saepe circinnatim incurvis. Folia

valde conferta, subrecte patula, late ovata, apice truncato-rotundata.

Cell. 17, basi 17 X 35 «, dorso haud papulosae, trigonis majusculis.

Lobulus parvus, caulis diametro aequilongus, carina sinuata, in

caule decurrente, apice angustato subrecte truncatus, acutangulus.

Amph. magna, imbricata, caule sextuplo latiora, transverse inserta,

subcircularia, ad ', incisa, sinu recto acuto lobis late acuminatıs,

acutis. Per. pseudolateralia, oblonga, plus duplo longiora quam lata,

inferne cylindrica, medio supero alte 5 plicata, plicis papulosis,

posticis divaricatim decurrentibus, rostro parvo. Folia flor. caulinis

majora, angustiora, apice rotundata, integerrima, lobulo duplo

breviore, lanceolato, acuto, usque ad basin fere soluto. Amph. flor.

ovatum, apice rima angusta brevissime bidentulum. Androecia

magna, cauligena, bracteis 4-5 jugis, magnis, confertis.

Hab. Brasilia Petropolis (Didrichsen). Sao Paulo (Krone).

Sao Francisco (Ule).

P. gigantea. St. n. sp. Sterilis, magna, pallide flavicans,

foliicola, flaccida. Caulis 2—3 cm longus, irregulariter pinnulatus,

tenuis. Folia late rotundato-ovata, apice anguste recurva, obtusius-

cula, valde concava. Cell. apice 12, medio 25 .« parietibus aequa-

liter incrassatis, basi 17 x 35 « trigonis distinctis. Lobulus maximus,

folio parum brevior, ovato-oblongus, valde inflatus et convolutus,

ie ihn ya Zi Kurze Als län Bi BEE SZ a Ze u Zn

196 . F. Stephani.

carina leniter arcuata, recte in folii marginem continua, apice angustato

excisus, angulo acuto. Amph. parva, dissita, exciso inserta, e basi

cuneata reniformia, caule 8plo latiora, apice truncato-rotundata

medioque brevissime exciso-biapiculata,. Reliqua desunt.

Hab. Amboina (Dr. G. Karsten).

Durch die mächtigen Lobuli und die eigenartigen Amphig. gleich

ausgezeichnet.

P. nicobarica. St. n. sp. Sterilis, minor, rufescens, in cortice

longe lateque expansa. Caulis 20-25 mm longus, dense breviterque

pinnulatus. Folia conferta, recte patula, oblique ovata, margine

antico arcuato, postico substricto, apice longius acuminata, obtusa.

Cell. apice 12, reliquae 17 « parietibus validis. Lobulus recte a

caule patulus, carina stricta, post apicem in folii marginem abrupte

sinuatum transiens, apice excisus, angulo dentiformi, apice duplo

angustior quam basi, valde inflatus. Amph. magna, remota, trans-

verse inserta, caule 5plo latiora, basi late obcuneata, apice valde

angustata, ad ", bifida, rima angusta, obtusa, laciniis acuminatis,

acutis. Reliqua desunt.

Hab. Insula Katschall (Nicobarae). (Sulp. Kurz n. 3901).

P. papulosa. St. n. sp. Dioica, flavo-rufescens, laxe caespi-

tans, corticola. Caulis 20—25 mm longus, irregulariter pinnatus,

pinnulis recte patentibus. Folia dense imbricata, dorso longe soluta,

caulem haud superantia, late ovata, apice rotundata angusteque

recurva. Cell. apice 17, medio 25 « basi parum longiores, papulosae

parietibus validis. Lobulus oblongus, duplo longior quam latus,

subrecte patulus, turgidus, apice emarginatus, angulo dentiformi,

carina parum arcuata levi sinu excurrens. Amph. caule 5 plo latiora,

decurrentia et exciso inserta, reniformia, apice ad |, lunatim

emarginata, laciniis apiculatis, porrectis. Per. pseudolateralia, magna,

rufescentia, pyriformia, 5 carinata, plicis postieis longe divaricatim

decurrentibus, rostro subnullo. Folia flor. perianthio 2 plo breviora,

ex angusta basi obovata, lobulo magno, acuto, profunde soluto,

amph. flor. spathulato-rotundatum i. e. basi angustissimum, superne

abrupte ampliatum subeirculare, apice brevissime bidentulum, lobulis

brevi spatio coalitum. Androecia parva, cauligena, globosa, bracteis

2—3 jugis.

Hab. Brasilia (Ule), Trinidad (Crüger). Para (Spruce sub

nomine Pycenolejeunea contigua var. latifolia in Hep. Amaz.

et And.).

P. utriculata. St. n. sp. Dioica, fuscescens, minor, foliicola.

Caulis 20-25 mm longus, irregulariter pinnatus. Folia imbricata,

recte patula, late rotundata, apice truncato-rotundata, anguste recurva,

valde concava. Cell, 25, basi 25 X 45 u, trigonis acutis, majusculis,

Hepaticarum species novae IX. 127

Lobulus maximus, folio parum brevior, longe utriculatus, subrecte

patulus, apice abrupte erectus, fere triplo longior quam latus, valde

inflatus, angulo apicali solum plano, carina substricta, apice solum

abrupte erecta, sinu recto in folium abiens. Amph. remota, ovata,

transverse inserta, ad ', bifida, sinu recto acuto, lobis triangulatis

acutis. Perianthia pro planta maxima, pseudolateralia, oblonga,

duplo longiora quam lata, inferne compresso-cylindrica, apice rotun-

data, longissime rostrata, rostro perianthii diametro subaequante,

apice 5plicata, plicis posticis brevissimis, divaricatis, humilibus.

Fol. flor. caulinis duplo longiora, per. aequilonga, spathulata, apice

angustata, obtusa, lobulo '/, breviore, lanceolato, acuto, longe soluto.

Amph. flor. foliis suis parum brevius, ellipticum, ad !/, bifidum,

rima angusta, lobis cuspidatis apice setaceis. Androecia ignota.

Hab. Java (Prof. Stahl). Eine ausgezeichnete höchst sonderbare

Form; der Lobulus folii, welcher rechtwinklig vom Stengel absteht,

biegt kurz vor der Spitze in scharfem, kurzem Bogen nach aufwärts

und geht hier dann in den wiederum horizontal abstehenden Blatt-

rand über.

Strepsilejeunea Spruce.

St. acutata. St. n. sp. Monoica, gracillima, magnitudine

Microlejeunearum, muscicola, pallida. Caulis 20—30 mm longus,

dense regulariterque brevipinnatus. Folia contigua, oblique patula,

falcato-ovata, obtusa, a ventre visa concava, marginibus dorsum

versus recurvis. Cell. 8 u, basi parum majores; lobulus magnus,

folio duplo brevior, arcuatim adscendens, carina leniter arcuata,

angulo acuto excurrente, 3plo longior quam latus, apicem versus

parum angustatus, ipso apice recte truncatus, acutangulus. Amph.

majuscula, caule duplo latiora, transverse inserta, subrotunda, ad

medium bifida, sinu angusto obtuso, lobis obtusis. Per. pseudo-

lateralia, pro planta magna, compresso-obovata, 5 plicata, plicis posticis

humilibus divaricatis, usque ad medium perianthii decurrentibus,

rostro parvo. Folia flor. caulinis multo minora, ovato-oblonga,

acuminata, acuta, lobulo parum breviore, oblongo, obtuso, parum

soluto. Amph. flor. foliis suis multo majus, oblongum, ad '/; bifidum,

lobis lanceolatis, acutis. Androecia parva, cauligena, globosa,

bracteis confertis, bijugis.

Hab. Chile. (Herb. Lindenberg 6889 in Herb. Musei Vindob.).

St. Brotheri. St. n. sp. Dioica, minor, fusco-brunnea, dense

depresso caespitosa, corticola.. Caulis 15—20 mm longus, dense

multipinnatus. Folia imbricata, recte patula, ovato-oblonga, valde

concava, apice acuminata, acuta vel obtusa, late hamatim decurva.

Cell. apice 12, medio 17, basi 17 X 25 «, parietibus aequaliter in-

128 F. Stephani.

crassatis. Lobulus magnus, folio duplo brevior, valde variabilis,

subrectangulatus margine supero carinae parallelo vel e basa lata

longe fusiformi-angustatus, apice convoluto et sensim in folio atte-

nuato; carina semper substricta et recte a caule patente. Amph.

magna, parum imbricata, sinuatim inserta, late ovata, apice ad

'/, bifida, sinu lunato, lobis porrectis acutis. Flores © pseudolaterales.

Folia flor. caulinis majora, acuta, angulatim repanda, lobulo aequi-

longo, saepe subaequimagno vel angustiore, carina foliorum alte

longeque alata. Amph. flor. ad basin utroque latere lobis coa-

litum, late ovatum, apice valde angustato ad '/, bifidum, sinu pro-

funde lunato, lobis late triangulatis acutis. Androecia ignota.

Hab. Brasilia, Minas Geraes, Sitio (Weinio n. 64; Herb.

Brotherus).

St. campbelliensis. St. n. sp. Monoica, parva, olivacea,

muscicola.. Caulis 20—25 mm longus pauciramosus. Folia con-

ferta, oblique patula, ovata, apice acuta, breviter arcteque decurva,

antice papulosa. Cell. apice 8, medio 17, basi 12 X 25 «, trig,

majusculis, acutis. Lobulus magnus, linearis, oblique adscendens,

substrictus, 4plo longior quam latus, sub apice constrictus, carina

valde papulosa, apice truncatus, acutangulus, cum plica longiore in

folium excurrens. Amph. magna, imbricata, transverse inserta,

obovata, ad 1, biloba, rima angusta obtusa, lobis rotundatis.

Flores © pseudolaterales. Fol. flor. caulinis mülto majora late

spathulato-ovata, apice acuta, decurva, lobulo duplo breviore, angusto,

apice truncato, acuto. Amph. foliis suis aequilongum, ellipticum,

apice breviter bifidum, lobis rotundatis, Androecia parva, cauli-

gena, bracteis bijugis.

Hab. Campbell Islands (Kirk 306).

Bene distinceta cuticula antice papulosa et amphig. obtuse lobatis.

St. cavistipula. St. n. sp. Sterilis, minor, flavicans, muscis

consociata. Caulis 20—25 mm longus, crassus, paucis pinnulis in-

structus. Folia imbricata, recte patula, ovata, acuta, valde con-

cava, apice late decurva. Cellulae 17 «, basi parum longiores,

trigonis magnis, acutis, cuticula dorso valde verrucosa, verrucis ad 4,

cruciatim oppositis, alte conicis. Lobulus magnus, folio triplo

brevior, ovato-triangulatus, carina substricta, oblique adscendens,

valde verrucosa, angulo acuto excurrente, apice triplo angustiore

quam basi, oblique truncatus, acutangulus.. Amph. magna, sinuatim

inserta, reniformia, duplo latiora quam longa, caule 5plo latiora,

apice truncata, ad '/J, emarginata, lobis haud prominentibus obtusis.

Reliqua desunt.

Hab. Amboina (Dr. G. Karsten).

Hepaticarum species novae IX. 129

Bei keinem mir bekannten Lebermoose habe ich diese Form

und Anordnung dorsaler Papillen oder Warzen bisher gesehen; sie

sind übrigens nur bei starker Vergrösserung deutlich zu erkennen.

St. Curnowii. St. n. sp. Sterilis, parva, olivacea. Caulis

10—15 mm longus, parum ramosus, tenuis. Folia parum imbri-

cata, oblique patula, in plano falcato-ovata, apice acuta, argute

decurva. Cell. apice 12, reliquae 17 «, valde pellucidae, trigonis

distinctis, acuminatis. Lobulus magnus, folio duplo brevior, ob-

longus, duplo longior quam latus, curvatim adscendens, inflatus,

apice ad angulum obtusum solum planus, dein plica sinuata per-

cursus, carına valde arcuata, sinu obtuso excurrente. Amph. majus-

cula, dissita, transverse inserta, caule 5plo latiora, subrotunda, ad

s biloba, sinu angusto obtuso, lobis rotundatis vel obtusis, Reliqua

desunt.

Hab. Nova Zelandia (Colenso in Herb. Curnow). Durch die

grossen lobuli und stumpflappigen Amph. leicht kenntlich.

St. denticuspis. St. n. sp. Monoica, flavicans, minor,

gracilis, caespitans. Caulis 2-—-3 cm longus, remote breviterque

multiramosus. Folia imbricata, recte patula, ovato-oblonga, apice

acuminata, acuta, breviter eroso-dentata, breviterque decurva. Cell.

17 x 25, basi parum longiores. Lobulus cauli aequilatus, oblongus,

carina arcuatim adscendens, levi sinu excurrens, apice oblique trun-

catus acutangulus.. Amph. magna, imbricata, caule 5 plo latiora,

profunde exciso inserta, alis accretis, subcircularia, ad '/, lunatim

„emarginata, lobis latis brevibus obtusis. Per. terminalia haud inno-

vata, oblongo-clavata, alte 5 plicata, plicis posticis parallelis longe

decurrentibus, rostro magno. Fol. flor. caulinis multo minora,

oblonga, apice denticulata, lobulo parvo lanceolato, ad medium

soluto, dentato. Amph. fl. foliis suis minus, cuneatim-obovatum,

ad medium anguste excisum, lobis acuminatis, conniventibus denti-

culatis. Androecia parva, cauligena, bracteis 2—3 jugis.

Hab. Java (Paterson). Herb. Brotherus.

St. Gayana. St. n. sp. Dioica, parva, olivacea, dense

intricatim caespitosa. Caulis 10-—-12 mm longus, irregulariter

denseque pinnulatus. Folia imbricata, oblique patula, late falcato-

ovata, inferiora obtusa, superiora acuta vel apiculata apice vix decurva.

Cell. apice 8, medio 8X 12, basi 12 X 17 «, parietibus validis.

Lobulus magnus ovatus, inflatus, apice 3 plo angustior quam basi,

truncatus obtusangulus, carina arcuatim adscendens, levi sinu ex-

currens. Amph. majuscula, remotiuscula, sinuatim inserta, sub-

rotunda, ad !, bifida, sinu angusto, obtuso, lobis porrectis acutis.

Per. pseudolateralia, anguste pyriformia, aequaliter 5 plicata, plicis

angustis, apice umbonatim prominentibus, posticis longe decurrentibus,

Hedwigia Bd. XXXV. 1896, 9

130 F. Stephani.

rostro majusculo. Folia flor. caulinis multo latiora, ovata, acuta,

lobulo parum breviore, oblongo, acuto, ad Yy soluto. Amph. flor.

utroque latere alte coalitum, parte libera ovata ad ', bifida, rima

angusta, lobis oblongis acutis, Androecia ignota.

Hab. Chile (Gay. Herb. Mus. Paris).

Valdivia (Dr. Hahn. Herb. Jack).

St. Lindenbergii. St. n. sp. Dioica, pusilla, pallide-fNavi-

cans, muscicola. Caulis 12—15 mm longus, irregulariter ramosus.

Folia vix contigua, recte patula, late ovata, acuta vel obtusiuscula,

valde concava, apice breviter decurva. Cell. apice 12, medio 17,

basi 17 X 25 u regulariter hexagonae, parietibus crassis. Lobulus

magnus, brevis, subtriangulatus, basi 4 plo latior quam apice, carina

leniter arcuata, oblique adscendens et levi sinu excurrens, apice

excisus, angulo dente longiore armato. Amph. majuscula, remota,

h caule plus duplo latiora, transverse inserta, subrotunda, ad '); excisa,

lobis lanceolatis acutis, distincte conniventibus et incurvis. Per.

pseudolateralia, anguste pyriformia, 5 plicata, plicis papulosis, posticis

humilibus, longe decurrentibus, rostro parvo. Folia flor. caulinis

minora, similia, acuta, decurva, lobulo duplo breviore, angusto obtuso,

ad medium soluto. Amph. flor. late ovatum, vix ad '/ bifidum,

sinu lato obtuso, lobis cuspidatis, acutis, tortis. Androecia parva,

cauligena, apice interdum vegetativa, globosa, bracteis bijugis valde

cucullatis.

Hab. Brasilia, Minas Geraes (Herbar. Ldbg. 6895 in Herb.

| Mus.) Vindob. sub nomine Lej. diversifolia Ldbg. ms. *

St. simplex. St. n. sp. Dioica, olivacea, parva, muscicola.

Caulis 10-15 mm longus, parum ramosus. Folia imbricata,

subrecte patula, ovato-falcata, apice subacuta, concava, breviter

decurva. Cell. apice 8, medio 12 X 17, basi 12 X 25 u, trigonis

N magnis acutis. Lobulus arcuatim adscendens, oblongus, sub apice

constrictus, carina valde arcuata, sinu amplo excurrens, apice oblique

: truncatus vel excisus, angulo dentiformi. Amph. oblique patula,

remota, late obovata vel subrotunda, basi cuneatim angustata, exciso

’ inserta, ad "/; bifida, sinu obtuso, lobis obtusis. Per. pseudolateralia,

e basi stipitata late compresso pyriformia, apice rotundata, 5 plicata,

plicis posticis humilibus, subparallelis, longe decurrentibus, rostro

magno, brevi. Fol. flor. caulinis majora, similia, lobulo duplo

breviore, lineari, obtuso, apice vix soluto. Amph. flor. e basi

cuneata late ovatum, ad "; bifidum, sinu acuto lato, lobis late

triangulatis acutis. Androecia ignota.

Hab. Brasilia, Apiahy (Puiggari).

St. squarrosa. St.n.sp. Dioica, minor, fusco-brunnea, corti-

cola. Caulis 15—20 mm longus, irregulariter ramosus, ramis pauci-

Bde ı nie ae ae SE il, u Zap 5 tunen" En a ann 0 nigra 37 5 "Ein ui ZB u 2 m sä el E E VRTT rent

Hepaticarum species novae IX. 131

pinnatis. Folia vix imbricata, e basi alte saccata squarrose patula,

apice torta, dorso caulem late superantia, in plano late ovata, api-

culata. Cell. apice 8, medio 17, bası 17 X 25 u, ocella geminata

25xX25 u ad basin folii. Lobulus maximus, ovatus, inflatus, carina

valde arcuata, levi sinu excurrente, apice valde convolutus dein atte-

nuatim in folio desinens. Amph. remota, oblonga, cauli aequilata,

duplo longiora, transverse inserta, ad medium bifida, rima an-

gusta, lobis lanceolatis obtusis. Per. pseudolateralia, obovata,

5 plicata, plicis posticis parallelis, longe decurrentibus, rostro longo.

Folia flor. cum amphigastrio in excipulum erectum connata, ap-

pressa, folia perianthio parum breviora, apice crispula, rotundata,

lobulo angusto aequilongo, angulatim dentato, longius soluto, obtuso.

Amph. flor. anguste ligulatum, apice breviter bifidum, sinu pro-

funde lunato lobis acutis. Androecia ignota.

Hab. Brasilia (Ule 212).

Durch die sparrigen, gedrehten Blattspitzen sofort kenntlich,

eine in der Gattung und überhaupt bei den Lejeunien bisher nicht

beobachtete Eigenschaft.

St. trieristata. St. n. sp. Dioica, flavo-rufescens, minor,

dense caespitosa. Caulis 4—5 cm longus, longe ramosus, ramis

remote pinnulatis. Folia imbricata, recte patula, longe et abrupte

acuminata, cellulis plus minus conico-prominulis paucidenticulata,

maxime decurva. Cell. apice 17, medio 17, basi 25 u, trigonis

magnis. Lobulus majusculus, folio 3plo brevior, oblongus, 2plo

longior quam latus, curvatim adscendens, sub apice constrictus,

apice truncatus, obtusatus, carina valde arcuata, sinu profundo ex-

currente. Amph. majuscula, remota, patula, transverse inserta, sub-

rotunda, ad !/, profunde lunatim excisa, lobis latis acutis,. An-

droecia cauligena, bracteis 4-5 jugis, confertis.

Hab. Guadeloupe (l’Herminier).

Foliis abrupte cuspidatis, paucidentatis distincta.

St. Warnstorffii. St.n.sp. Dioica, parva, fusco-rufa, musci-

cola. Caulis 20-30 mm longus, longe pinnatus. Folia conferta,

oblique patula, in plano valde falcata, apice acuta valde decurva.

Cell. apice 12, medio 17, basi 25 X 35 u trigonis magnis acutis.

Lobulus magnus, sublinearis, 3plo vel 4plo longior quam latus,

valde oblique adscendens, carina margine supero parallela, apice

subrecte truncatus, obtusangulus, folio ceterum duplo brevior.

Amph. majuscula, subcontigua, transverse inserta, ovata vel ovato-

rotunda, ad !;, vel magis lunatim exeisa, lobis latis acutis leniter

conniventibus. Androecia parva, cauligena globosa, bracteis gemi-

natis vel bijugis.

Hab. Fretum magellanicum (Herb. Warnstorff).

132 F. Stephani.

Mit St. acuminata zu vergleichen. Da das Blatt unserer

Pflanze nicht symmetrisch, sondern sichelförmig zugeschnitten ist,

liegt die weit eingebogene Spitze nicht auf der Mediane des

Blattes, sondern ist dem ventralen Blattrande genähert; ein sehr in

die Augen fallendes Merkmal.

Taxilejeunea Spruce.

T. albescens. St. n. sp. Sterilis, magna, pallida, procumbens

vel pendula. Caulis 6-8 cm longus, dense regulariterque pinnu-

latus apice longe simplex. Folia parum imbricata, oblique a caule

patentia, subrotunda, apice obtusiuscula, concava, margine postico

anguste decurva. Cell. apice 11, medio 25, basi 25 X 35 u, trig.

parvis. Lobulus ad plicam minutam triangularem reductus. Amph.

maxima, foliis aequimagna, reniformia, '/, latiora quam longa, exciso

inserta, alis liberis rotundatis, optime cordata, apice ad '/, biloba,

sinu recto acuto, lobis haud prominentibus obtusis. Reliqua desunt.

Hab. Insulae Philippinae (Micholitz).

Eine schöne, leider sterile Pflanze, welche den amerikanischen

Verwandten mit ähnlichen sehr grossen Unterblättern nahe steht.

T.brasiliensis. St. n. sp. Monoica, mediocris, flavo-virens,

foliicola.. Caulis 4—5 cm longus, paueipinnatus, tenuis. Folia

imbricata, recte patula. magna, optime ovata, apice obtusa. Lobulus

folio 5 plo brevior, oblique adscendens, carina substricta, levi sinu

excurrens, oblongus, duplo longior quam latus, apice recte truncatus,

acutangulus cum plica angusta in folii marginem longe attenuatus.

Amph. majuscula, caule 8 plo latiora. transverse inserta, subrotunda,

ad '/, bifida, sinu angusto obtuso, lobis acutis. Per. juniora, pseudo-

lateralia, obconica, apice truncata, breviter 5 plicata, plicis papulosis,

rostro magno; fol. floral. caulinis multo minora, ovato-oblonga,

integerrima, acuminata vel apiculata, lobulo lineari plicaeformi.

Amph. flor. magnum, foliis suis longius et duplo latius, late ob-

ovatum, ad !, bifidum, sinu acuto, lobis longe acuminatis, extus

magno dente armatis, interdum pluridentatis. Androecia parva,

cauligena, bracteis bijugis.

Hab. Brasilia, Tubarao (Ule 262).

T. Colensoana. St. n. sp. Dioica, parva, pallide-virens,

muscicola. Caulis 15—20 mm longus, pauciramosus, tenuis.

Folia contigua vel parum imbricata, e basi saccata breviter falcatim

patula, apice angustiora, rotundata. Cell. apice 12, medıo basique

17 u trigonis distinctis; Lobulus maximus, disco folii aequimagnus,

saccatus, late ovatus, carina valde arcuata, sinu profundo in folium

excurrens, apice leniter emarginatus obtusangulus, ceterum inflatus,

margine supero tamen plano appresso. Amph. remota, oblique a

ET REN We , . " y Br 2% VO ' ie in 5, RE

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Hepaticarum species novae IX. 133

caule patentia, transverse inserta, caule duplo latiora, ovata, ad !

anguste excisa, lobis acutis. Per. pseudolateralia, obovata, parum

compressa, perfecte eplicata, rostro parvo. Fol. flor. caulinis minora,

ovata, acuta, lobulo lanceolato, parum soluto, plus minus longo.

Amph. flor. obovatum, ad '/, bifidum, rima angusta, lobis acutis.

Androecia parva, cauligena, globosa, bracteis geminatis.

Hab. Nova Zelandia (Colenso).

l.ej. gracilipes differt statura majore, lobulis multo angustiori-

bus, amphig. magnis, caule 5plo latioribus et perianthio anguste .

clavato.

T. cuculliflora. St. n. sp. Monoica, flavo-rufescens, major.

Caulis 6-8 cm longus, multiramosus, ramis saepe crebre pinnulatis,

aliis longe simplicibus. Folia imbricata, recte patula, ovato-falcata,

i. e. margine antico valde arcuato, postico substricto, apice acuta.

Cell. apice 12, medio 25, basi 25 X 35 « trigonis parvis. Lobulus

majusculus, foliis 4 plo brevior, oblongus, carina parum arcuata et

levi sinu excurrente, apice 2 plo angustior quam basi, recte truncatus,

acutangulus. Amph. majuscula, transverse inserta, subrotunda, ad

!/, anguste lunatim excisa, lobis acutis. Perianthia pseudolateralia,

juniora clavata, compressa, eplicata, apice profunde breviterque ex-

cisa, rostro subnullo, adulta late compresso-pyriformia, eplicata, superne

marginibus cucullatim recurvis. Folia flor. caulinis majora,

oblongo-spathulata, apice obtusa, deflexa, lobulo ' breviore, linearı,

longe soluto obtuso. Amph. flor. ovatum, ad ', bifidum, rima

angusta, lobis acuminatis acutis. Androecia parva, cauligena,

bracteis geminatis vel bijugis.

Hab. Viti Insulae (Dr. Graeffe).

T. fusco-rufa. St.n.sp. Monoica, fusco-rufa, mediocris, in

rupibus caespitans. Caulis 2—3 cm longus, pauciramosus, pro

planta crassus. Folia parum imbricata, recte patula, oblongo-ovata,

obtusa. Cell. apice 17, medio 17/25, basi 17X35 « trig. nullis.

Lobulus parvus, rectangulatus, plicaeformis. Amph. majuscula,

caule 3 plo latiora, sinuatim inserta, alis basalibus rotundatis, ad

3), bifida, sinu obtuso, laciniis porrectis, lanceolatis, acutis. ber

pseudolateralia, anguste obconica, inermia, compressa, apice truncata,

brevirostria, postice sub apice inter plicas breves divaricatas convexa.

Folia flor. caulinis multo minora, oblongo-spathulata, apice obtusa,

-deflexa, lobulo duplo breviore, lanceolato, longe soluto. Amph.

flor. late obovatum, ad 's bifidum, lobis acuminatis, hamatim

conniventibus, Androecia parva, cauligena, globosa, bracteis

bijugis.

Hab. Brasilia, Sta. Catharina (Ule 52).

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F. Stephani.

Lejeunea heterocheila Taylor, a Spruceo Hygrolejeuneis

adjuncta, melius ad Taxilejeuneas ponenda est, secundum specimen

in Herbario Kewensi asservatum.

T. Jeringii. St. n. sp. Monoica, minor, flavo-virens, musci-

cola. Caulis 3—4 cm longus, paucipinnatus. Folia imbricata,

oblique patula, rotundato-triangulata, apice irregulariter denticulata,

dente medio majore interdum apiculata. Cell, apice 25, medio 35,

basi 2540 u, trigonis acutis, margine papulose prominentes,. Lobulus

minimus, rectangulatus, plicaeformiss, Amph. remota, caule 4 plo

latiora, sinuatim inserta, subrotunda, ad '; biloba, sinu subrecto

obtuso, lobis obtusis. Per. pseudolateralia, oblonga, duplo longiora

quam lata, parum compressa, ubique laevia, apice truncata, erostrata

5 angulata. Folia flor. caulinis multo minora, oblonga vel fere

lanceolata, acuminata, margine repando irregulariter lobulata; lobulo

duplo breviore angusto longius soluto; amph. flor. foliis suis aequi-

longum, obovatum, ad '/; bifidum, rima angusta, lobis obtusis extus

varie angulatis, interdum subdentatis. Androecia parva, cauligena,

globosa, bracteis bijugis.

Hab. Rio Grande (Ihering).

In dem Speciesnamen habe ich absichtlich das h fortgelassen,

um die falsche Aussprache des Wortes (welches bekanntlich Jehring

klingt, aber Jhering geschrieben und stets falsch gesprochen wird)

nicht auch noch in das Ausland zu verpflanzen.

T. luzonensis. St. n. sp. Monoica, pallide flavo-virens,

mediocris, muscicola. Caulis 20—25 mm longus, longe ramosus

pinnulis floriferis utriusque sexus instructus. Folia pro planta

magna, imbricata, recte patula, oblique late ovata, apice rotundata,

margine postico stricto. Cell. apice 17, reliquae 25 X 35 u, trig.

nullis. Lobulus majusculus, oblongus, 2plo longior quam latus,

apice oblique in marginem folii attenuatus, obtusangulus, carina sub-

stricta, recte in marginem excurrens. Amph. majuscula, caule 5 plo

latiora, exciso inserta, cordiformia, ad fere ®, bifida, sinu angusto

obtuso, lobis obtusis. Per. pseudolateralia, e basi obcuneata circum-

scriptione subrectangulata, apice truncata, brevirostria, compresso

Splicata, plicis inermibus. posticis parallelis, longe decurrentibus.

Fol. flor. caulinis multoties minora, spathulato-oblonga vel breviora,

obtusa, lobulo magno, longe soluto, obtuso. Amph. flor. obovatum,

utroque latere coalitum, ad '/; bifidum, rima angusta, lobis acumi-

. natis, falcatim conniventibus. Androecia parva, bracteis geminatis

vel solitariis.

Hab. Insula Luzon (Micholitz).

T. macroloba. St. n. sp. Monoica minor, sulphurea, folir-

cola. Caulis 3—4 cm longus, simplex vel pauciramosus, tenuis,

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Hepaticarum species novae IX. 135

Folia imbricata, oblique patula, late ovata, acuta. Cell. apice 17,

medio 25 u basi parum longiores, angulis medioque incrassatae.

Lobulus magnus (interdum nullus) inflatus, ovatus, apice con-

volutus longeque attenuatus, carina arcuatim adscendens, levi sinu

excurrens. Amph. remota, caule 5plo latiora, transverse inserta,

"subecircularia, ad '/, bifida, sinu angusto obtuso, lobis acutis. Per.

pseudolateralia, compressa, oblonga, fere clavata, plus 2plo longiora

quam lata, sub apice inter plicas breviter divarıcatas convexa, apice

truncato-rotundata, profunde excisa, rostro magno immerso. Folia

flor. caulinis angustiora, ovato oblonga, acuta, integerrima, lobulo

parvo, plicaeformi. Amph. flor. late ovatum, superne grosse re-

moteque dentatum, apice ad '/; bifidum, rima angusta, lobis acutis.

Androecia parva, cauligena, bracteis paucijugis.

Hab. Brasilia. Sao Francisco (Ule),. Cuba (Eggers 5096).

T. martinicensis. St. n. sp. Dioica, flavescens, longissima,

pendula vel prostrata. Caulis 6—8 cm longus, paucipinnatus saepe

simplex. Folia vix imbricata, oblique patula, late ovata, acuta vel

apiculata, integerrima, vel apice oblique truncato -bidentata, margine

postico saepe decurvo. Cell. apice 17, medio 35 «, basi parum

majores, angulis medioque parum incrassatae. Lobulus parvus,

caulis diametro aequilongus, ovatus, apice truncatus, acutangulus.

Amph. maxima, foliis majora, cordiformia, profunde (ad !J;) exciso

inserta, alis liberis, rotundatis, haud conniventibus, apice ad !/, an-

guste incisa sinu obtuso, lobis acuminatis acutis. Per. pseudo-

lateralia, oblongo-ovata, 2plo longiora quam lata, superne 5 angularia,

angulis integerrimis, apice truncata, angulis conico concurrentibus,

rostro omnino nullo. Fol. flor. caulinis multo minora, ovato-lanceo-

lata, integerrima, acuta, lobulo plicaeformi. Amph. flor. foliis suis

aequilongum, duplo latius, ovatum, ad !/J; lunatim excisum, lobis

acuminatis acutis conniventibus interdum paucidentatis. Androecia

ignota.

Hab. Martinique (l’Herminier).

Cum T. debili comparanda.

T. multiflora. St. n. sp. Dioica? olivacea, major muscicola’

frustulum solum inventum. Folia parum imbricata, oblique pa-

tula, late ovata, apice rotundata. Cell. 17X35 4 basi vix majores.

Lobulus plicaeformis triangulatus vel nullus. Amph. majuscula

remota, transverse inserta, late ovata, ad ', bifida, sinu angusto

acuto, lobis acutis. Per. pseudolateralia, conferta, clavata, adulta,

sub 3 plo longiora quam lata, apice leniter excisa, brevirostrata,

5 plicata, plicis inflatis, brevibus, umbonatim prominulis. Folia

flor. oblonga 3 plo longiora quam lata, apice rotundata, lobulo

136 F. Stephani.

4 plo breviore, lineari, plicaeformi. Amph. flor. oblongum, foliis

suis aequilongum, ad Y, bifidum, rima angusta, lobis acutis. An-

droecia ignota.

Hab. Brasilia subtropica (inter muscos) (leg.?)

T. parvibracteata. St.n.sp. Monoica, viridis, in foliis longe,

lateque expansa. Caulis 6—8 cm longus, pinnulis numerosis

maxime fructiferis ramosus, filiformis. Folia imbricata, oblique

patula, ovata vel subligulata, apice apiculata. Cell. apice 25, medio

35 X 50, basi 35 X 70 u, trigonis subnullis, lobulus omnino nullus,

Amph. parva, remota, caule filiformi octuplo latiora, basi late rotun-

data, ad medium bifida, sinu recto obtuso, lobis porrectis late trian-

gulatis acuminatis acutissimis. Per. pseudolateralia, anguste pyri-

formia, superne alte 5 plicata, plicis posticis divaricatis usque ad !g

perianthii decurrentibus, rostro magno, fol. flor. parva, lanceolata

acuta, elobulata;, amph. flor. ovato-obcuneatum, ad ",, bifidum,

sinu angusto acuto, lobis acuminatis acutis. Androecia minima,

cauligena, bracteis paucijugis.

Hab. Costarica, Rio Naranjo (Tonduz 3077F).

Pulcherrima planta, cum T. flaccida S. et bombonasensi S$.

comparanda.

T. Stevensiana. St.n.sp. Dioica, pallide-favicans, subhya-

lina, flaccida et tenera, laxe intricata. Caulis 6-7 cm longus, pro

more simplex, rare una alterave pinnula instructus. Folia contigua,

recte patula, in plano falcato-ovata, cuspidata, acuta, apice decurva.

Cell. apice 17, medio 17 X 25, basi 20 X 35 « angulis medioque

parum incrassatae. Lobulus parvus, cauli aequilatus, carina oblique

adscendens, stricta, sinu profundo excurrens, apice 3 plo angustior

quam basi, truncatus obtusangulus. Amph. magna, approximata,

cordiformia, sinuatim inserta, ad '/, bifida, sinu angusto obtuso, lobis

acuminatis acutis. Per. pseudolateralia, optime pyriformia, longe

exserta, medio supero 5 plicata, plicis altis, integerrimis, posticis

parallelis, rostro minimo. Fol. flor. caulinis multoties minora, lanceo-

lata, cuspidata, acuta, lobulo duplo breviore, simili, longe soluto.

Amph. flor. ovato-oblongum, ad ", bifidum, sinu acuto, lobis acu-

minatis acutis. Androecia ignota.

Hab. Himalaya. Sikkim (L. Stevens 511).

Pulcherrima planta, perianthiis profunde plicatis distincta et

quasi aliena.

T. Uleana. St. n. sp. Monoica, parva, flavo-virens, foliicola.

Caulis 20—25 mm longus, inferne regulariter pinnulatus, superne

longe simplex. Folia parum imbricata, recte patula, ovato-falcata,

i. e. margine antico valde arcuato, postico substricto, apice acuta.

Cell. apice 12, reliquae 25 «, incrassatio nulla, valde pellucidae.

Hepaticarum species novae IX. 137

Lobulus cauli aequilatus, parvisaccatus apice oblique truncatus,

acutangulus vel subnullu. Amph. minima, cauli aequilata, ovata,

transverse inserta, ad ?, lunatim excısa, lobis lanceolatis acutis.

Per. pseudolateralia, obconica, superne alte 5 plicata, plicis crebre

obtuseque denticulatis, rostro parvo. Folia flor. minima ovata,

acuta, lobulo lineari, plus minus soluto. Amph. flor. breviter ligu-

latum, lobulis alte coalitum, ad !, bifidum, lobis obtusis vel rotun-

datis. Androecia parva, cauligena, globosa, bracteis geminatis.

Hab. Brasilia, Blumenau (Ule 73).

T. Vallis gratiae. St.n.sp. Dioica, flaccida, tenera, pallide-

virens, muscicola. Caulis 3—4 cm longus, vage ramosus. Folia

contigua, recte patula, late ovata, acuta, plana. Cell. apice 17 X 35,

reliquae 25-50 «u trig. nullis. Lobulus parvus, recte patulus, cauli

aequilatus, duplo longior quam latus, subrectangulatus, apice oblique

truncatus, angulo dentiformi. Amph. majuscula, remota, transverse

inserta, late ovata, ad ?, incisa, sinu angusto acuto, lobis porrectis

acutis. Per. pseudolateralia, oblonga, fere 3 plo longiora quam lata,

superne 5 plicata, plicis inflatis, apice umbonatim prominentibus,

integerrimis rostro magno. Folia flor. ovata, acuminata, acuta,

grosse paucidentata, lobulo 3 plo breviore, lineari, acuto, vix soluto.

Amph. flor. magnum late ovatum, vix ad !;; bifidum, sinu angusto

acuto, lobis acuminatis acutis. Ändroecia ignota.

Hab. Prom. bonae spei. Gnadenthal (Breutel).

Perianthiis inflato-plicatis bene distincta.

Trachylejeunea Spruce.

T. cristulaeflora. St. n. sp. Monoica, hyalina, minor, folii-

cola. Caulis 15-20 mm longus, parum ramosus, tenuis. Folia

remota, recte patula, margine papuloso-crenulata, e basi cuneatim

angustata (dorso longe soluta) late ovata, obtusa. Cell. apice 8,

medio 17 X 25, basi 25 X 40 « trigonis nullis. Lobulus majusculus,

recte patulus, subovatus, carina tamen.substricta, recte in folıi mar-

ginem continua, apice 2 plo angustior quam basi, oblique truncatus,

obtusangulus, cum plica longiore in folii marginem attenuatus.

Amph. remota, parva, caule 2 plo latiora, sinuatim inserta, bası ob-

conica, ad ?/ lunatim excisa, lobulis lanceolatis, parum divaricatis,

apice obtusis. Perianthia pseudolateralia, anguste pyriformia, superne

5 plicata, plicis crebre lacinulatis, lacinulis obtusis, pluriseriatis, irre-

gularibus, interdum ramosis, rostro longo. Folia flor. caulinis

similia, lobulo magno, oblongo, parum soluto, acuto. Amph. flor.

foliis suis aequimagnum, utroque latere alte coalitum, parte libera

late ovata, ad !\; biloba, sinu profunde lunato, laciniis acutis.

Androecia parva, cauligena, bracteis 3 jugis.

Hab. Brasilia, Apiahy (Puiggari).

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138 F. Stephani.

T. Didrichsenii. St. n. sp. Monoica, parva, fusco-rufa, in

cortice dense caespitans. Caulis 10—15 mm longus, multiramosus,

Folia vix imbricata, recte patula, falcato-ovata, acuta vel obtusa,

margine cellulis prominulis papulosa. Cell. marginales 17, reliquae

17 X 25 «, angulis vix incrassatis. Lobulus majusculus, caule

3 plo brevior, oblongus, basi inflatus, apice convoluto multo angustiore,

oblique truncatus, sub apice constrictus, carina arcuatim adscendens,

sinu plus minus profundo in folium excurrens. Amph. parva,

caule parum latiora, remota, transverse inserta, subcircularia, ad

a bifida, sinu recto acuto, lobis latis acutis. Per. pseudolateralia,

juniora compresso-obconica, adulta longe pyriformia, superne alte

5 plicata, plicis crebre lacinulatis, laciniis angustis, irregularibus, saepe

ad dentem reductis vel in lobulum parvum confluentibus; plicae

posticae parallelae, longe decurrentes, rostro majusculo. Folia flor.

caulinis multo minora, sublanceolata, acuta, lobulo !; breviore, longe

accreto, angusto, acuto. Amph. flor. ligulatum, foliis suis aequi-

longum, ad '/, bifidum, lobis acutis. Androecia parva, cauligena,

bracteis 4—6 jugis confertis valde cucullatis.

Hab. Brasilia. Petropolis (Didrichsen. Exp. Galatheae).

Minas Geraes, Sitio (Weinio).

T. Spruceana. St.n.sp. Dioica, major, rufescens, muscicola.

Caulis 2-3 cm longus, parum ramosus. Folia imbricata, recte

patula, late ovata, dorso longe soluta, caulem haud superantia, apice

obtusa vel rotundata, margine cellulis conico prominulis denticulata.,

Cell. apice 17, basi 17 X 34 u trigonis acutis majusculis. Lobulus

magnus, ovatus, inflatus, apice duplo angustiore quam basi, excisus,

longe dentatus, carina arcuatim adscendens, levi sinu excurrens.

Amph. majuscula, remota, transverse inserta, subrotunda, margine

ubique denticulata ad !', bifida, sinu recto acuto, lobis late trian-

gulatis acutis. Androecia parva, cauligena, globosa, bracteis

paucijugis.

Hab. Guadeloupe (l’Herminier).

Diese Pflanze, welche Spruce früher einmal eingeschickt hat,

ohne sie zu benennen, habe ich dem verewigten Freunde zu Ehren

mit seinem Namen belegt.

Thysanolejeunea Spruce.

Th. appendiculata. St. n. sp. Dioica robusta, subnigra,

corticola, Frullaniis consociata. Caulis 4—5 cm longus, lignosus,

remote pinnatus, pinnulis brevibus, strictis, oblique patulis. Folia

conferta, falcatim patula, in plano late ovata, acuta, apice denticulata,

in planta viva ob marginem posticum arcuatum valdeque involutum

optime falcata, Cell apice 12X17, medio 17X25, basi 17X40 u trig.

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Hepaticarum species novae IX. ’ 139

magnis acutis, saepe confluentibus. Lobulus in folii margine

recurvo occultus, carina lobulo majore pendulo appendiculata.

Amph. conferta, magna, in plano late obcuneata, sinuatim inserta,

margine supero rotundato, denticulato, marginibus lateralibus ad basin

recurvis. Androecia in medio ramulorum fusiformia, saepe pinnata,

pinnis aequaliter antheridiiferis; bracteis 10—12 jugis, foliis caulinis

similibus, basi tantum magis saccatis.

Hab. Nova Guinea. Flyriver branch. (Bäuerlen in Herb.

Mus. Melbourne.)

Appendicula pendulo facile cognoscenda,; cum Th. fructicosa

et lJanceolata comparanda.

Th. lanceolata. St. n. sp. Dioica, fusco-rubra, in cortice

effuse caespitans, robusta, magna. Caulis erectus, 10-12 cm longus,

durus lignosusque, dense aequaliterque pinnatus, Bryolejeuneis

simillimus, pinnis oblique patentibus, in planta © magis remotis,

rarius iteratim pinnulatis. Folia conferta, oblique patula, oblonga,

fere 3 plo longiora quam lata, acuminata, acuta, medio supero grosse

dentata, dentibus triangulatis pluricellularibus, acutis. Cell. 12 X17 ı,

parietibus validis, axiales multo majores 17 X 70 «u, parietibus trabe-

culatim incrassatis. Lobulus parvus, ad plicam truncatam reductus,

carina grosse alata. Amph. imbricata, ovata, sinuatim inserta, medio

infero integerrima, margineque anguste recurva, supero grosse dentata,

apice emarginata, biloba, lobis denticulatis. Per. pseudolateralia,

immersa, obconico-triquetra, apice truncata anguste cristata, cristis

irregulariter lacinulatis rostro parvo. Folia flor. anguste lanceolata,

longe acuminata, acuta, serrata, lobis magnis planis duplo brevioribus,

ligulatis, usque ad basin fere solutis, serrulatis, apice truncato bi-tri

laciniatis. Amph. fl. oblongum 3plo longius quam latum, marginibus

late recurvis, serratis, apice valde angustatum, apice bifidulum.

Androecia ignota.

Hab. Nova Guinea. (Kärnbach 56. Herb. Mus. Berol.)

Cum Th. fruticosa comparanda.

Th. reversa. St.n.sp. Dioica, robusta, stratificata et longe

lateque expansa, corticola, rufescens. Caulis 6—8 cm longus, remote

longeque multiramosus, saepe subfasciculatus, flagellanumerosa. Folia

conferta falcatim patula, in plano late ovata, acuta, integerrima, in

planta viva valde concava, marginibus posticis maxime incurvis, ut

folia antice posticeque aequaliter tecta appareant (unde nomen

plantae). Cell. apice 12 X 17, medio 17 X 25, basi 20 X 40 ı,

trig. magnis, acutis. Lobulus perfecte occultus, parvus, maxime

nvolutus, integerrimus, acutangulus. Amph. magna conferta, oblonga,

iob margines laterales recurvos longe obcuneata, apice rotundata,

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140 F, Stephani,

integerrima, retusa. Perianthia pseudolateralia, trigono -obconica,

alte cristate, cristis varie spinosis et lacinulatis, Fol. flor. caulinis

aequimagna, latiora, acuta, integerrima, apice valde recurva, lobulo

magno, plano, late ovato, profunde, soluto, apice bilobato, ubique

dentato. Amph. fl. oblongum, per. subaequilongum, apice emarginato-

bifidum, ubique serrulatum, marginibus recurvis. Androecia in

medio caulis, magna, fusiformia, bracteis 20—30, confertis, e basi

saccata subrecte patulis, apice valde decurvis, lobulo apice convoluto.

Hab. Insula Dapitan. Philippinae (Micholitz). Insulae Anda-

manae (E. H. Man. Herb. Levier).

Foliis curiosissime tectis distincta.,

Brasilianische Pteridophyten.

Von H. Schenck.

Die im nachfolgenden Verzeichniss aufgezählten 230 Arten von

Pteridophyten habe ich in den Jahren 1886 und 1887 in Brasilien

gesammelt. Sie stammen hauptsächlich aus der Provinz St. Catharina

(Desterro, Itajahy, Blumenau, Joinville, Serra do Mar zwischen

Joinville und Säo Bento), aus der Provinz Rio de Janeiro (Umgegend

von Rio, Serra dos Orgäos, Cabo Frio an der Küste östlich von der

Hauptstadt, Serra do Picüu an dem Grenzpunkte von Rio de Janeiro,

Minas geräes und S. Paulo) und aus Minas (Campos von Sitio,

Queluz, Congonhas do Campo, Serra do Ouro Branco, Ouro Preto,

Itacolumi), nur einige wenige Arten von Paranaguä in der Provinz

Parana und von Pernambuco.

Zum grössten Theile verdanke ich die Bestimmung der Arten

dem am 13. Dezember 1894 in Friedenau - Berlin verstorbenen

Professor Dr. M. Kuhn, mit dessen Ableben wir den Verlust eines

unserer besten Farnkenner zu beklagen haben. Noch wenige Stunden

vor seinem unerwarteten Tode war Kuhn, dem ich ein dankbares

Angedenken bewahre, mit der Bearbeitung dieser Farnsammlung be-

schäftigt. Die noch nicht erledigten Gruppen hat Herr Dr. Christ

in Basel bestimmt; ihm spreche ich dafür meinen verbindlichsten

Dank aus.

Nur eine Cyathea hat sich nach der Untersuchung des Herrn

Dr. Christ als neue Art herausgestellt, indessen dürfte die Publication

der ganzen Liste wegen der vielfach neuen Standorte und der genaueren

Angabe der Art des Vorkommens von einigem Interesse sein und

als Material für fernere Arbeiten dienen können.

Der systematischen Aufzählung sei eine Zusammenstellung der

gesammelten Arten nach ihrer Zugehörigkeit zu den Formationen

vorausgeschickt.

1. Strandvegetation. In der Ipomoea-pes-caprae-Formation des

Strandsandes und der Sanddünen unmittelbar am Meeresufer finden

sich keine Pteridophyten vor, wohl aber in der Restingaformation,

welche sich auf flachem, sandigem Litoral hinter den Dünen oft

mehrere Kilometer weit landeinwärts ausdehnt. Die Restingaformation

BEE Sn

142 H. Schenck.

ist z. B. ausgeprägt bei Itajahy, bei Rio an der Lagoa de Rodrigo

de Freitas und Copacabana, bei Cabo Frio, ferner bei Boa Viagem

nicht weit von Pernambuco; sie besteht hauptsächlich aus niedrigen

immergrünen Sträuchern, dazwischen Säulencacteen, Sandbromeliaceen

und die Buschpalme Diplothemium maritimum. Ueberall kommt der

weisse Sandboden zwischen dem Gesträuch hervor; in diesem treten,

oft gesellig wachsend, folgende Farne auf: Pteris aquilina L. var.

esculenta Hook., Aspidium coriaceum Sw., Polypodium brasiliense

Poir., Polyp. Lepidopteris Kze., Polyp. latipes L. et F. — Epiphytisch

auf Restingasträuchern kommt das auch sonst sehr verbreitete

Polypodium vaceiniifolium L. et F. vor. — Auf feuchtem Sandboden

und an sumpfigen Orten in der Restinga wachsen: Lycopodium

alopecuroides L., Adiantum obtusum Dsv., Blechnum serrulatum Rich.,

Meniscium serratum Cav. — Auf Felsen dicht am Strand fanden sich

Polypodium menisciifolium L. et F., Polypodium Lepidopteris Kze.,

Doryopteris varians J. Sm., Selaginella rupestris Spr., Selag. convoluta

Spr. — Zu erwähnen ist, dass Pteris aquilina, Selag. rupestris und

convoluta bei Rio auch an den Gipfelfelsen des Corcovado (712 m)

wiederkehrten, ferner dass Aspidium coriaceum, Polypodium latipes

und Polyp. Lepidopteris auch im Wald als Epiphyten gefunden

wurden. — Für die Mangrovesümpfe und zwar nach der Landseite zu,

ist ausschliesslich das stattliche Chrysodium aureum charakteristisch.

2. Sumpf- und Wasservegetation. In Sümpfen wurden beobachtet:

Ösmunda regalis L. var. palustris Presl, Aspidium unitum Mett.

var. hirsutum Mett., Lomaria tabularis Mett.; auf Sumpfwiesen

zwischen Sphagnum: Doryopteris lomariacea Klotzsch zusammen

mit Utricularien und Eriocaulaceen. — Asplenium obtusifolium L.

wächst stets dicht an Waldbächen, Wasserfällen, theils submers,

theils stets von Wasser benetzt und dementsprechend haben die

Fiederblättchen auch die Textur von submersen Blättern.

Als Schwimmpflanzen treten auf Marsilea polycarpa Hook. et Grew,

Salvinia minima Baker, Salv. auriculata Aubl., Azolla filiculoides Lam.

3. /mmergrüner Tropenwald der gebirgigen Küstenprovinzen.

Hier findet sich die Hauptmasse der brasilianischen Farne, eine

ausserordentliche Fülle von Arten. Vor Allem characteristisch sind

die Baumfarne, welche sich im Schatten des Waldes, besonders gern

in Waldschluchten, an Waldbächen, an den Abhängen der Gebirge

ansiedeln, dann die zahlreichen Epiphyten, die weniger zahlreichen

Kletterfarne, und endlich die Fülle der bodenbewohnenden Arten,

von denen manche Manneshöhe erreichen und oft gesellig auftreten.

Baumfarne der Wälder von Rio sind: Alsophila Taenitis Kze.,

Als. Miersii Hook., Als. arbuscula Presl., Als. paleolata Mart., Als.

armata Mart., Als. microdonta Dsv., Als. leucolepis Mart. — In

Brasilianische Pteridophyten. 143

Sta. Catharina treten auf: Cyathea arborea Sm., Cyath. Schanschin

Mart., Alsophila Taenitis Kze., Als. armata Mart., Als, atrovirens Pr. —

Auf dem Plateau und in der obersten Region der Serra do Mar von

Sta. Catharina findet sich Dicksonia Sellowiana Hook. in grosser

Menge, oft mit Araucarien und Bambusen zusammen, sie gehört also

schon der oberen subtropischen Waldregion an und tritt auch unter-

halb des Kammes der Serra dos Orgäos bei Rio in einer Höhe

von ca. 2000 m wieder auf.

Epiphyten des Waldes sind folgende Arten, von denen die

auch auf dem Boden oder an Felsen gelegentlich oder häufiger vor-

kommenden mit * bezeichnet sind:

Lycopodium sarmentosum Spr. Polypodium Glaziovii Baker.

re linifolium L. ri achilleaefolium Klf.

a 7 dichotomum Jacq. ei u vacciniifolium Lgsd. et F.

Trichomanes pyxidiferum L. | * „ tectum KIf.

iR brasiliense Dsv. “= en latipes L. et F.

1 radicans Sw. ar r rhizocaulon Willd. (auch

A sinuosum Rich. kletternd).

*]Iymenophyllum angustatum Carm. = ” incanum Sw.

r s, asplenioides Sw. ie H Lepidopteris Kze.

u ” polyanthos Sw. u angustifolium Sw. var.

* IM caudiculatum Mart. taeniosum Moore.

£ M ciliatum Sw. P lapathifolium Lam.

ie 1 pulchellum Schld. 2 n Phyllitidis L.

“ di elegans Spr. “ E; repens Aubl.

lL.oxoscaphe theciferum Moore. > 7 squamulosum Kif.

*Asplenium oligophyllum Kli. | lanceolatum L.

” pteropus KIf. | R elongatum Mett.

* ” auritum Sw. | * R percussum Cav.

mucronatum Pr. | * n crassifolium L.

m scandicinum Klf. | r angustum Mett.

*Nephrolepis tuberosa Pr. | Vittaria lineata Sw.

*Aspidium coriaceum Sw. | e graminifolia Klf.

*Polypodium scetosum Mett. Acrostichum Lingua Raddi.

u brevistipes Mett. | Fi acrocarpum Sw.

ni pilosissimum Mart. et Gal. | R Aubertii Dsv.

Bemerkenswerth ist, dass an den Stämmen der Farnbäume sich eine

besondere epiphytische Farnflora ansiedelt, ausschliesslich sehr zarte,

schattenliebende Formen, die in dem dichten Wurzelfilz und zwischen

den Wedelstielresten an diesen Stämmen ein vorzügliches feuchtes

Substrat für die Befestigung ihrer Rhizome und Wurzeln vorfinden.

Von obigen Farnen wurden ausschliesslich an Farnbäumen gefunden:

Trichomanes sinuosum, Trich. brasiliense, Trich. angustatum,

Asplenium mucronatum; mit Vorliebe an solchen, aber nicht aus-

schliesslich: Asplenium scandicinum und Polypodium Glaziovii, ferner

häufig auch Trichomanes radicans und endlich Asplenium auritum,

Polypodium latipes, Vittaria lineata.

Ei An 74 7 an

144 H. Schenck.

Als Epiphyt in den Wedelstielresten an einer Palme fand sich

Polypodium leucatomos Willd. bei Pernambuco.

Kletterfarne im Wald sind die mit ihren sehr langen Wedel-

stielen windenden: Lygodium venustum Sw., Lyg. volubile Sw. und

Salpichlaena volubilis J. Sw., welch’ letztere hoch auf die Bäume

hinaufgeht, ferner die wurzelkletternden, mit langen emporkriechenden

Rhizomen versehenen: IDomaria polypodioides Dsv., Aspidium

abbreviatum Schrad., Polypodium rhizocaulon Willd. (dieses auch

ganz epiphytisch vorkommend), Lomariopsis scandens Mett., Lo-

mariopsis marginata Kuhn und Polybotrya osmundacea H. B. Kth.

Bodenfarne, im Humusboden der Wälder wurzelnd oder an

feuchten, schattigen Felsen, sind folgende, von denen die stattlichsten

Formen mit !, die felsbewohnenden mit * bezeichnet sind:

* Lycopodium verticillatum L. ! Adiantum brasiliense Raddi,

* Psilotum triquetrum Sw. r „ cuneatum L. et F.

* Selaginella jungermannioides Spr. Cheilanthes radiata R. Br.

* e guatemalensis Bak. Doryopteris nobilis J. Sm.

* ö tlexuosa Spr. r 7 sagittifolia J. Sm.

4 m eurynota A. Br. ” d; pedata Brack.

* . brasiliensis A. Br. ! Pteris incisa Thbg.

en contigua Bak. „ splendens KlIf.

! Marattia Kaulfussii J. Sm. „ denticulata Sw.

Danaea elliptica Sm. ! „ macroptera Lk.

Aneimia caudata Klf. ! „.. "dedurrens-Pr.

i. Phyllitidis Sw. ! „ altissima Poir.

* 5; hirsuta Sw. „ leptophylla Sw.

! Mertensia pubescens H. B. Kth. ! „ pedata Kuhn.

Trichomanes elegans Rich. ! „. Jatı Kit

% rigidum Sw. ' Lomaria l’Herminieri Bory.

* er reptans Mlett. ! Blechnum brasiliense Dsv.

* . venustum Dsv. | E longifolium H. B. Kth.

* HIymenophyllum asplenioides Sw. 5 striatum Mett.

* b- caudiculatum Mart. * Asplenium serratum L.,

r ” ciliatum Sw., er oligophyllum KlIf.,

* nu hirsutum Sw. | n lunulatum Sw.

* ” microcarpum Dsv. | i; pulchellum Raddi.

e ee plumosum KlIf. | z adiantoides Raddi.

na hi seselifolium Pr. ' Diplazium plantagineum Sw.

! Cnemidaria grandifolia Spr. | ri arboreum Pr.

! Dennstaedtia tenera Mett. 1-4 21 strictum Pr,

! 2 cornuta Mett. 6 3 radicans Dsv.

! je rubiginosa Moore. Scolopendrium brasiliense Fisch.

Lindsaya virescens Sw. | ! Didymochlaena lunulata Dsv.

, bifida Mett. . *!Nephrolepis tuberosa Pr.

35 Lancea Mett. ' ! Aspidium muricatum Willd.

T portoricensis Dsv. |! Mr invisum Sw.

Adiantum trapeziforme L. | ne falciculatum Raddı.

N pulverulentum L. A 5 Raddianum Mett.

5 curvatum KIf. ! I alsophilaceum Kze.

nn Kal Zu N Te are FED Ba Be Zu 2 El En Sr an A en une nn 0 re > ah

Brasilianische Pteridophyten. 145

!' Aspidium amplissimum Mett. ' * Polypodium tectum KIf.

! u macrophyllum Sw. si 1 Phyllitidis L.

! Phegopteris Navopunctata Fce. e BY repens Aubl.

! n effusa Fee. * decurrens Raddi.

! AR platyphylla Mett. ! n crassifolium L.

! 5 fulgens Mett. * Vittaria Gardneriana Fee.

! m subincisa Ice. ' * Pleurogramme seminuda Kuhn.

r aspidioides Mett. Hemionitis tomentosa Raddi.

s; Linkiana Mett. * (aymnogramme chaerophylla Dsv.

u prolifera Mett. * Antrophyum lanceolatum KIf.

„ rude (Kze.). * Acrostichum Lingua Raddi.

* Polypodium setosum Mett. N viscosum Sw.

Er pectinatum L. ! Polybotrya cervina KIf,

" recurvatum L.

4. An Wegböschungen, lehmigen Abhängen, Rainen, also an offenen

Stellen im Gebiete des Waldes der Küstenprovinzen findet sich stets

eine Anzahl von Pteridophyten vergesellschaftet vor, unter denen

Lycopodium cernuum L., Mertensia pectinata Willd. und Ceropteris

Calomelanos Lk. die häufigsten sind. Ausserdem: Lycopodium

reflexum Lam., Lyc. clavatum L. var. trichiatum Bory, Lyc.

carolinianum L., Lyc. complanatum I., Lyc. taxifolium Sw.,

Selaginella brasiliensis A. Br., Aneimia tomentosa Moore, Aneimia

Phyllitidis Sw., Mertensia pruinosa Mart., Mert. bifida Willd., Mert.

flexuosa Schrad., Mert. nervosa KIf.;, Adiantum denticulatum Sw.,

Doryopteris concolor Kuhn, Blechnum asplenioides Sw., Blechn.

occidentale L., Aspidium oppositum Sw., Polypodium taxifolium L.

Für diese Standorte sind auch die Flechte Cora pavonia, das rothe

Lebermoos Isotachys serrulata und Polytrichum antillarum, die oft

ausgedehnte Teppiche zusammen bilden, charakteristisch.

5. Die Serra dos Orgaos, im Hintergrunde der Bai von Rio,

erhebt ihre Gipfelfelsen bis zu beträchtlicher Höhe (nach Gardner

bis zu ca. 2280 m, nach Wells 2377 m); sie ragen theils als steile,

kahle oder nur mit Felspflanzen oder Gesträuch bewachsene Felsen-

kegel aus dem Wald empor, theils als breitere Kuppen, von denen

der Morro do Gigante auf seinem muldenförmigen Hochplateau

die Campos das Antas (ca. 2100 m hoch) trägt. Auf dem moorigen

feuchten Boden dieser Campos elevados wächst in grosser Menge

die buschige, kaum mannshohe Bambusee Chusquea pinifolia Trin.,

dazwischen in grosser Menge Lomaria tabularis Mett. als Zwergfarn-

baum. Am Boden kriechen a. A. Lycopodium alopecuroides L. und

Selaginella brasiliensis A. Br. Moura fand daselbst auch Blechnum

striatum Mett.

Dicht unterhalb der Campos das Antas findet sich ein niedriger

Buschwald von knorrigen, dicht mit Moosen und Flechten behangenen

Bäumen (Drimys Winteri), in welchem Dicksonia Sellowiana Hook.

Hedwigia Bd. XXXV, 1896. 10

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A 1 aaa le Ze DE ie de 0. aa a de an na a ec nt

146 H. Schenck.

als Farnbaum, Lycopodium clavatum L. var. trichiatum Bory,

Asplenium Serra Langsd. et F. als Bodenfarne und Hymenophyllum

polyanthos Sw., Hym. pulchellum Schldl., Polypodium organense Mett.,

Polyp. asplenifolium L., Acrostichum conforme Sw., Acrost. latifolium

Sw. als Epiphyten beobachtet wurden. Unter diesem Buschwald folgt

felsiges, steiles Terrain mit Felsgesträuch bis hinab zur oberen Grenze

des Haupt-Waldes der Serra. An diesen hochgelegenen Felsen

wächst Pteris paradoxa Kuhn. Theresopolis, eine vorzügliche Station

für botanische Ausflüge in den Wald der Serra dos Orgäos, liegt

900 m hoch.

6. Minas geraös. Die Campos geraös von Minas geraös (Sitio,

Barbacena, Queluz, Congonhas do Campo) liegen auf dem ca. 1000 m

hohen Plateau der Provinz, das in weiter Ausdehnung von Campos

abertos (offene Grascampos mit eingestreuten Sträuchern und ganz

vereinzelten Bäumen) bedeckt wird, in den Senkungen und an Berg-

hängen aber auch kleine Waldbestände trägt, die eine andere Zu-

sammensetzung aufweisen als der Wald der Küstengegenden, vor

Allem viel ärmer an Farnen und Epiphyten sind,

Auf den offenen sonnigen Campos wachsen nur wenige xerophile

Farne, vor Allem Aneimia oblongifolia Sw., Aneimia tomentosa

Moore, Lindsaya stricta Dry. Adiantum sinuosum Gardn.

In Camposwäldern finden sich als Baumfarne Cyathea Gardneri

Hook. und Alsophila villosa Pr.; als Epiphyten: Polypodium

taxifolium L,, Polyp. latipes L. et F.; als bodenständige Farne an

schattigen Stellen: Lycopodium clavatum L., var. trichiatum Bory,

Adiantum subcordatum Sw., Adiantum cuneatum L. et F., Blechnum

brasiliense Dsv., Blechnum striatum Mett., Cheilanthes chlorophylla Sw.

Reicher an Farnen ist Ouro Preto mit seiner gebirgigen Umgebung.

Ouro Preto liegt im Osten der Serra do Espinhago, nicht weit von

der Grenze des Küstenwaldes, welcher sich von dem Ocean bis zu

den Quellflüssen des Rio Doce und seiner Nebenflüsse erstreckt.

Bei Ouro Preto fanden sich folgende Arten bodenständig oder an

Felsen:

Lycopodium reflexum Lam. Blechnum asplenioides Sw.

E intermedium Spr. Asplenium formosum Willd.

z alopecuroides L. Nephrolepis tuberosa Pr.

z carolinianum L. Aspidium mexicanum Pr.

complanatum L. A denticulatum Sw.

Selaginella jungermannioides Spr. Polypodium setosum Mett.

6; muscosa Spr. dd areolatum Willd.

Osmunda cinnamomea L. Psilogramme myriophylla Kuhn,

Mertensia pruinosa Mart. Ceropteris trifoliata Kuhn.

Trichomanes pilosum Mart. - Calomelanos Lk.

Hymenophyllum plumosum KlIf. Acrostichum tectum Willd.

s elegans Spr. u strictum Raddi.

Brasilianische Pteridophyten. 147

Epiphytisch wachsen hier Polypodium lanceolatum L., Asplenium

auritum Sw., Asplen. praemorsum Sw. (dieses auch an Felsen).

In der Serra do Ouro Preto tritt Cyathea Schenckii Christ als

Farnbaum auf.

An dem Gipfelfelsen des Itacolumi (1750 m) und ebenso auf

dem Kamm der Serra do Öuro branco zwischen Congonhas do

Campo und Ouro Preto erscheint die höchst eigenartige Fels-

vegetation der baumartigen Vellozien, zwischen denen von Farnen

nur die kleinen xerophilen Arten Cassebeera pinnata Klf., Lindsaya

stricta Dry. und Polypodium moniliforme Lag. beobachtet wurden.

Die Abhänge des Itacolumi sind grösstentheils von Gras- oder

Gesträuchecampos eingenommen, in den Senkungen kleinere Wald-

bestände. Unter dem Gipfelfelsen findet sich ein kleines niedriges

Waldstück, in welchem das eigenthümliche Lycopodium fontinaloides

Spring als Epiphyt auftritt.

Lycopodiaceae (Christ).

Lyceopodium reflexum Lam.

Sta. Catharina: In der Serra do Mar an der Strasse von Joinville

nach Sio Bento häufig, an Lehmhängen, Felsen, Fr., 1886 23.11.

No. 1236. — Rio de Janeiro: Am Corcovado an feuchten Felsen

zwischen Moos, Fr., 1887 19.1. No. 2125; Serra dos Orgäos, schr

häufig an Lehmhängen, Fr., 1887 21.2. No. 2566; Serra do Picü an

der Grenze von S. Paulo, Minas und Rio de Janeiro, häufig an Weg-

böschungen, Fr., 1886 11.12. No. 1518. — Minas geraös: DOuro Preto,

an feuchten Lehmhängen, Fr., 1887 11.4. No. 3609. nun

Lycopodium intermedium Spring.

Minas geraös: Ouro Preto, bodenständig zwischen Moos, Fr., 1887

8.4. No. 3585.

Lycopodium fontinaloides Spring.

Minas geraös: Ouro Preto, im Wald unterhalb des Gipfels des

Itacolumi, epiphytisch, büschelig lang herabhängend, Fr., 1887 12.4.

No. 3638.

Lycopodium verticillatum L.

Sta. Catharina: Auf der Ilha de Sta. Catharina, an feuchten,

schattigen Felswänden im Wald, 1886 7.9. No. 86, in der Serra do

Mar bei Joinville; bodenständig zwischen Moos, Fr., 1886 23.11.

No. 1244.

Lycopodium sarmentosum Spring.

Sta. Catharina: Blumenau, epiphytisch im Wald, Fr., 1886 18.9.

No. 312.

10*

En >= Ba HALL n

148 H. Schenck.

Lycopodium linifolium L.

FParana: Paranaguä, epiphytisch an Bäumen, junge Pflanzen,

1886 3.9. No. 82.

Lycopodium dichotomum Jacqa.

Sta. Catharina: Desterro, im Wald an Felswänden, 1886 5.9.

No. 83; Blumenau, häufiger Epiphyt mit aufrechten Zweigen in den

Baumkronen, 1886 19.9. No. 197; Fr., 20.9. No. 198; Fr., 2.10.

No. 282; 28.10. No. 877. — Rio de Janeiro: Am Corcovado, Epiphyt

im Wald, 1886 Dec. No. 1741; Serra dos Orgäos, Theresopolis,

Epiphyt im Wald, 1887 23./2. No. 2703.

Lycopodium taxifolium Swartz.

Rio de Faneiro: Serra do Picu an der Grenze von S. Paulo und

Minas, an Felsen, Lehmwänden, Fr., 1886 12.12. No. 1432.

Lycopodium alopecuroides L..

Rio de Janeiro: Mauä an der Bai von Rio, an sumpfigen Stellen

in der Restinga, Fr., 1887 16.1. No. 2060; Serra dos Orgäos, sumpfige

Stellen bei Theresopolis, Fr., 1887 2.3. No 2977, Campos das Antas

auf dem Kamm der Serra dos Orgäos, ca. 2100 m, an feuchten

Orten auf Moorboden, Fr., 1887 26.2. No. 2836. — Minas geraös:

Serra do Ouro preto, an Lehmhängen, Fr., 1887 8./4. No. 3596.

Lyceopodium cernuum L.,

Sta. Catharina: l\lha de Sta. Catharina, auf Waldlichtungen häufig,

Fr., 1886 7.9. No. 85; Blumenau, sehr häufig an Wegböschungen,

oft zusammen mit Mertensia pectinata Willd. und nervosa Klf, sowie

Cora pavonia, 1886 18.9. No. 84; Fr., 22.9. No. 179.

Lycopodium clavatum L.. var. trichiatum Bory.

Sta. Catharina: Serra do Mar bei Joinville, sehr häufig mit Lyco-

podium cernuum zusammen an Wegrändern, Waldlichtungen, Fr.,

1886 23.11. No. 1266. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, im

Buschwald unterhalb der Campos dos Antas am Kamme, am Boden

kriechend, 1887 26.2. No. 2845. — Minas geraös: Serra do Picü an

der Grenze von Rio de Janeiro und S. Paulo, in der höheren Wald-

region, Fr., 1886 11./12. No. 1522; Congonhas do Campo, an schattigen

Stellen, 1887 3.4. No. 3454.

Lyeopodium carolinianum L.

Rio ae Janeiro: Tijuca bei Rio, an Wegböschungen, Fr., 1887

27.4. No. 3779, Serra dos Orgäos, an l.chmhängen an der Strasse

nach Theresopolis, Fr., 1887 3./3. No. 2980. — Minas: Serra do Ouro

preto, an Lehmhängen, Fr., 1887 8./4. No. 3597.

EDLER: N. Be 5 RE Ed. ehe s EMI he ae a ee nun 1 nn he le See

Brasilianische Pteridophyten. 149

Lycopodium complanatum L.

Sta. Catharina: Serra do Mar bei Joinville, sehr häufig an Wald-

rändern am Boden sich ausbreitend, Fr., 1886 23./11. No. 1260.

Minas: Serra do Pieu an der Grenze von S. Paulo und Rio de Janeiro,

in der höheren Waldregion sehr häufig am Boden in Waldlichtungen,

an Wegrändern, Fr., 1886 10.12. No. 1439, Serra do Ouro preto,

1887 8.4. No. 3568.

Psilotum triquetrum Sw.

Rio de Janeiro: Rio Comprido bei Rio de Jan., an Felsen im

Wald, steril., 1887 24.1. No. 2224.

Selaginellaceae (Christ).

Selaginella rupestris Spr.

Rto de Janeiro: \.agoa de Rodrigo de Freitas bei Rio, auf Felsen

am Strand sehr häufig, 1886 21.112. No. 1657, am Nordfuss des Päo

d’assucar ausgedehnte Polster auf Felsen bildend, Fr., 1887 14.3.

No. 3070; Gipfel des Corcovado, an sonnigen Felsen, 1886 Dec.

No. 1760.

Selaginella microphylla Spr.

Sta Catharina: Campo Alegre auf der Serra do Mar zwischen

Joinville und Sio Bento, Polster bildend auf Felsen an einem Wasser-

fall, Fr., 1886 24.11. No. 1302.

Selaginella jungermannioides Spr.

Sta. Catharina: Campo Alegre auf der Serra do Mar zwischen

Joinville und Sao Bento, zwischen Gras an feuchten Orten, Fr., 1886

24.11. No. 1293. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, an feuchten

Felsen im Wald, Fr., 1887 24.2. No. 2756. — Minas: Duro Preto,

an feuchten Abhängen, Fr., 1887 9.4. No. 3602.

Selaginella guatemalensis Baker.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, feuchte Felsen im Wald, Fr.,

1887 24.12. No. 2760.

Selaginella flexuosa Spr.

Sta. Catharina: Blumenau, an feuchten schattigen Orten, am Boden

weithin kriechend, steril, 1886 Sept. 29 No. 126. — Rro de Janeiro:

Corcovado, feuchte Felsen an der Wasserleitung zwischen Sphagnum,

Fr., 1886 Dec. No. 1768 und No. 1769; Morros do Corcovado im Wald

1887 12.1. No. 2004; Morro de Säo Joäo bei Rio im Wald 1887 8.1.

No. 1939.

Selaginella eurynota Al. Braun.

Rio de Janeiro: Morro da Saudade bei Rio, im Wald am Fusse

von Felsen, Fr., 1887 11.1. No. 1997.

ale 2 "© 2 un ie © U iigin ae a San 2a ne Dein ale na a a an ln Bi en a a a A a aa nt a et ar bee ae

H. Schenck.

Selaginella Cunninghami Baker?

Rıo de Janeiro: Corcovado, an feuchten Lehmwänden an der

Wasserleitung, Fr., 1886 31./8. No, 88,

Selaginella brasiliensis A. Braun.

Sta. Catharina: \\ha de Sta. Cath., an Felsen zwischen Moos

1886 12.9. No. 87, Blumenau, Garciathal, an Wegrändern, lehmigen

Böschungen 1886 23.9. No. 185; am Salto do ‘Norte des Itajahy,

auf Steinen 1886 4.10. No. 380, Serra do Mar bei Joinville, Fr.,

1886 23./11. No. 1270.

Rio de Janeiro: Morros do Corcovado bei Rio, an feuchten

Felsen im Wald, Fr., 1886 26.]12. No. 1685; Corcovado, an feuchten

Felsen an der Wasserleitung, Fr., 1886 Dec. No. 1742; Kamm der

Serra dos Orgäos, an feuchten Stellen der Campos das Antas 1887

26.2. No. 2839,

Selaginella muscosa Spr.

Minas: Ouro Preto, an feuchten Lehmwänden 1887 11.'4. No. 3616;

Selaginella contigua Baker.

Sta. Catharina: Blumenau, im Wald am Boden, an Waldbächen,

Fr., 1886 18./9. No. 311; Fr., 6.10. No. 514; Fr., 27.10. No. 845.

Selaginella convoluta Spr.

Rio de Janeiro: \.agoa de Rodrigo de Freitas bei Rio, an Felsen,

Fr., 1886 18.12. No. 1627; Fr., 1887 16.12. No. 2523; Felsen am

Strand von Copacabana bei Rio 1886 17./12. No. 1603; am Nordfuss

des Päo d’assucar an Felsen 1887 14./3. No. 3073; am Gipfelfelsen

des Corcovado 1886 Dec. No. 1761.

Marsileaceae (Christ).

Marsilea polycarpa Hook. et Grev.

Pernambuco: Schwimmend in Gräben bei Beberibe 1886 4.l6.

No. 4059,

Salviniaceae (Christ).

Salvinia minima Baker.

Sta. Catharina: \tajahy, am Ufer des Flusses 1886 15.9. No. 81.

Salvinia auriculata Aubl.

Rio de Faneiro: Zwischen Bananal und Piedade an der Bai von

Rio, auf Tümpeln und Bächen, 1887 3./3. No. 3000; Cabo Frio, Tümpel

in den Restinga 1887 8.5. No. 3933.

Azolla filiculoides Lam.

Sta. Catharina: lItajahy, in Gräben, Fr., 1886 13.111. No. 1125.

Marattiaceae (Christ).

Marattia Kaulfussii J. Sm.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, bodenständig im Wald bei

Theresopolis, Fr., 1887 22./2. No. 2598.

N Men So u

a a td aan na Bill 5a ie. Fe

Brasilianische Pteridophyten. 151

Danaca elliptica Sm.

Sta. Catharina: Blumenau, häufig im Wald am Boden, steril

1886 25.110. No. 799. — Rio de Janeiro: Corcovado, am Boden im

Wald, steril 1887 29.4. No. 3792,

Osmundaceae (Kuhn).

Osmunda regalis L. var. palustris Presl.

Sta Catharina: Desterro, in einem Sumpfe, Fr., 1886 12.9. No. 12;

Blumenau, Fr., 1886 22.10. No. 760.

Osmunda cinnamomea |.

Minas: Ouro Preto, an Mauern und Felsen, Fr., 1887 11.4.

No. 3609.

Schizaeaceae (Kuhn).

Aneimia oblongifolia Sw.

Minas: Queluz, auf trockenen Campos, Fr., 1887 30.3. No. 3359;

Congonhas do Campo, auf Campos, Fr., 1887 2./4. u. 4.4. No. 3427.

Aneimia caudata Klf.

Rio de Janeiro: Corcovado, bodenständig im Wald, Fr., 1886

31.8. No. 15, 1886 Dec. No. 1740 u. 1772.

Aneimia hirsuta Sw.

Rio de Janeiro: Corcovado, an der Mauer der Wasserleitung,

Fr., 1886 31.8. No. 16.

Aneimia tomentosa Moore var. «. (An. villosa H. B. K.,

flexuosa Sw.).

Sta. Catharina: Desterro, Fr., 1886 5.9. No. 13. — Rio de

$aneiro: Corcovado, bodenständig im Wald, Fr., 1886 Dec. No. 1754;

Rodeio, an sonnigen Stellen, Lehmhängen, Fr., 1887 5.2. No. 2422. —

Minas: Serra do Picu, auf den Campos elevados, ca. 2000 m, Fr.,

1886 11./12. No. 1562; Sitio, auf Campos, Fr., 1887 März No. 3135

und 3250.

Aneimia tomentosa Moore, var. 3. (An. tomentosa Sw.,

ferruginca H. B. R.).

Sta. Catharina: Desterro, trockene Stellen, an Felsen, Fr.,

1886 Sept. No. 18 u. 21. — Minas: Congonhas do Campo, auf den

Campos, Fr., 1887 3.4. No. 3439,

Aneimia Phyllitidis Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, häufig an Grasrainen zusammen mit

Mertensien, Fr., 1886 17.10. No. 700. — Rio de Janeiro: Corcovado,

bodenständig an schattigen Stellen im Wald, Fr., 1886 31.8. No. 14;

1886 Dec. No. 1764.

Lygodium venustum Sw.

Pernambuco: Päo d’alho, Fr., 1887 9.6. No. 4106, Wedel hoch-

windend.

u a a ee ae

152 H. Schenck.

Lygodium volubile Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, windend in Gesträuch und im Wald,

steril 1886 22,9. No. 196; Fr., 1886 15.10. No. 646 u. 26.10.

No. 802. — Rio de Janeiro: Corcovado, im Wald, junge Pflanzen,

1886 31.8. No. 17 und 1886 Dec. No. 1747; Fr., 1886 Dec. No. 1762;

Lagoa de Rodrigo de Freitas bei Rio, im Wald, Fr., 1886 18.12.

No. 1628; Nordfuss des Päo d’assucar, Fr., 1887 14.3. No. 3039.

Gleicheniaceae (Christ).

Mertensia pubescens H.B.K.

Sta. Catharina: Desterro, am Flaggenberg, Fr., 1886 5./9. No, 19;

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, hoher Waldfarn bei Theresopolis,

steril 1887 24.2. No. 2727.

Mertensia pruinosa Mart.

Minas: Serra do Picü, an der Grenze von S. Paulo und Rio de

Janeiro, Fr., 1886 11.12. No. 1451; Serra do Ouro Preto, Fr., 1887 7.14. i

No. 3552.

Mertensia bifida Willd.

Sta. Catharina: Blumenau, an Rainen, Waldrändern, stattlicher

hoher Farn, Fr., 1886 29.9. No. 141. — Rio de Janeiro: An der

Strasse von Botafogo nach Tijuca an lehmigen Wegböschungen, Fr.,

1887 27.4. No. 3777.

Mertensia pectinata Willd.

Sta. Catharina: Desterro, sehr häufig an Wegrändern, Wald-

lichtungen, oft ausgedehnte Strecken mit hohem Bestand überziehend,

Fr., 1886 12./9. No. 10 u. 11; Blumenau, Garciathal, an lehmigen Weg-

böschungen, junge Pflanzen 1886 23.9. No. 184; Joinville, halb-

kletternd, in Waldlichtungen, Fr., 1886 18.11. No. 1200. — Rio de

Janeiro: Am Morro da boa Vista, Fr., 1886 23.112. No, 1680.

Mertensia flexuosa Schrader.

Rıo de Janeiro: An offenen Waldstellen, in der Capoeira, an

Wegrändern bei Rio, Fr., 1886 26.112. No. 1687 (= M. rigida Kunze);

Serra do Picüu, an der Grenze von S. Paulo und Minas, 1886 11./12.

No. 1517.

Mertensia nervosa Klfs,

Sta. Catharina: Blumenau, häufig an Wegrändern, Rainen, Fr.,

1886 Sept. No. 23 u. 183. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, auf

Weiden bei Theresopolis, Fr., 1887 2.3. No. 2968; Serra do Picu,

an der Grenze von Minas und S. Paulo, Fr., 1886 11.j112. No. 1530.

Hymenophyllaceae (Kuhn).

Trichomanes elegans Rich.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständig im Wald an schattigen

Orten, Fr., 1886 Sept. u. Nov. No. 96, 919, 1018. Wedel mit

Brasilianische Pteridophyten. 153

blaugrünem Metallschimmer, Wurzelstock ca. 5 cm lang, aufrecht,

l cm dick, mit zahlreichen, kräftigen 1 mm dicken Wurzeln,

Triehomanes reptans Mett. var. Kraussii Mett.

Sta. Catharina: Blumenau, zwischen Moos an Felsen am Salto

do Norte des Itajahy, Fr., 1886 4.10. No. 382.

Trichomanes reptans Mett. var. muscoides Mett.

Sta. Catharina: Desterro, an feuchten Felswänden lebermoos-

artige Polster bildend, steril 1886, 7.9. No. 7.

Trichomanes sinuosum Rich.

Sta. Catharina: Desterro, Fr., 1886 5.9. No. 2; Blumenau, Fr.,

1886 Nov. No. 915 und 1034; Sio Dento auf dem Hochland der

Provinz 1886 25.11. No. 1339. — Stets als Epiphyt an Farnbäumen

im Wald auftretend, in der Regel zusammen mit anderen Hymeno-

phyllaceen, wie Trichomanes angustatum Carm., eine dichte Fülle

um die Farnstämme bildend.

Trichomanes brasiliense Desv.

Sta. Catharina: Blumenau, Epiphyt an Farnbäumen, Fr., 1886

7.10. No. 531.

Trichomanes pyxidiferum L.

Rio de Fanetro: Theresopolis in der Serra dos Orgäos, Epiphyt

Trichomanes radicans Sw.

Sta. Catharina: Desterro, Epiphytisch an Farnbäumen im Wald,

Fr., 1886 8.9. No. 3; Blumenau, Epiphytisch an Farnbäumen und

anderen Waldbäumen, Fr., 1886 Sept., Octob., Nov. No. 143, 679,

959; Blumenau, im Wald am Boden kriechend an feuchten Stellen,

junge sterile Pflanzen, 1886 Oct. No. 520, 681; Säo Bento, Epiphyt

im Wald, Fr., 1886 25./11. No. 1332. — Rio de Janeiro: Serra dos

Orgäos, Theresopolis, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 24.2. No. 2754.

Trichomanes pilosum Mart.

Minas geraös: Ouro Preto, an feuchten Felsen, Fr., 1887 11./4.

No. 3594.

Trichomanes angustatum Carm.

Sta. Catharina: Blumenau, Fr., 1886 Sept. No. 9, 468, Sao Bento

Fr., 1886 25.11. No. 1340. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos,

Theresopolis, Fr., 1887 24.2. No. 2744. — Stets als Epiphyt an

Farnbäumen im Wald, herabhängende zarte Polster bildend.

Triehomanes rigidum Sw.

Sta. Catharina: Desterro, an feuchten schattigen Orten am Boden

im Wald, Fr., 1887 7.9. No. 8; Blumenau, an feuchten Felswänden

an Waldbächen, Fr. 1886 16,10. No. 683.

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H. Schenck.

Trichomanes venustum Dsv.

Rio de Janeiro: Corcovado, feuchte Felsen an der Wasserleitung,

Fr., 1886 Dec. No. 1745.

Hymenophyllum asplenioides Sw.

Sta. Catharina: Desterro, an schattigen feuchten Felswänden,

Fr., 1886 5.9. No.1. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Thereso-

polis, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 23./2. No. 2702.

Hymenophyllum polyanthos Sw.

Sta. Catharina: Serra do Mar bei Joinville, Epiphyt, Fr , 1886

23.11. No. 1242. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, bei Thereso-

polis an Felsen im Wald und auch epiphytisch an Bäumen, 1887

Febr. No. 2571, 2672; Buschwald unterhalb der Campos das Antas

(2100 m) am Kamme der Serra dos Orgios, Epiphyt 1887 26.2.

No. 2837.

Hymenophyllum caudiculatum Mart.

Sta. Catharina: Desterro, an schattigen feuchten Felswänden im

Wald, Fr., 1886 Sept. No. 4 u. 5. — ZKio de Janeiro: Serra dos

Orgäos, Theresopolis, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 Febr. No. 2698

und 2745.

Hymenophyllum ciliatum Sw.

Sta. Catharina: Desterro, an feuchten schattigen Felswänden

zusammen mit Hym. asplenioides Sw. und Trichomanes reptans v.

muscoides Mett., Fr., 1886 5.9. No. 6. — Rio de Janeiro: Serra dos

Orgäos, Theresopolis, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 22.2. No. 2652.

Hymenophyllum hirsutum Sw.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, an feuchten

Felsen im Waldesschatten, 1887 22.2. No. 2615.

Hymenophyllum microcarpum Dsv.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, an feuchten

Felsen im Wald, 1887 24./2., Fr., No. 2755.

Hymenophyllum pulchellum Schldl. \

Rio de Janeiro: Kamm der Serra dos Orgäos, in dem Busch-

wald unterhalb der Campos das Antas (2100 m), epiphytisch, Fr.,

1887 26.2. No. 2838.

Hymenophyllum plumosum Klf.

Rıo de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, an Felsen, 1887

21.2. No. 2570, Serra do Picü an der Grenze von Minas und S.

Paulo, an Felsen, Fr., 1886 12.112. No. 1430. — Minas: Serra do

Ouro Preto, an schattigen Felsen, 1887 8./4. No. 3569.

Hymenophyllum elegans Spr.

Sta. Catharina: Blumenau, Epiphyt 1886 2.10. No. 292. —

Minas: Ouro Preto, an feuchten Felsen, Fr., 1887 11.4. No. 3612.

“

Brasilianische Pteridophyten. 155

Hymenophyllum seselifolium Pr. = H. attenuatum Hook.).

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, an Felsen an einem Wasser-

fall im Wald, Fr., 1887 25.2. No. -

Cyatheaceae Christ).

Cyathea arborea Smith.

Sta. Catharina: Am Fuss der Serra do Mar bei Joinville, Farn-

baum im Wald, 1886 23.11. No. 1254; Blumenau, häufig im Wald,

1886 6.11. No. 1031. — Das Exemplar von Blumenau zeichnete sich

durch Bildung von adventiven Fiedern aus der Basis der älteren

Wedel aus. Diese Fiedern stehen zu mehreren abwechselnd rechts

und links an der Wedelstielbasis, sind ca. 15 cm lang und unten

4 cm breit, 2—3fach gefiedert mit entfernt stehenden zarten etwa

3 mm langen Fiederblättchen. Dr. Christ bemerkt, dass sie ganz

ähnlich wie die trichomanes ähnlichen bei era capensis seien;

sie weichen bedeutend in der Form von den normalen Fiedern ab. —

Der Stamm von No. 1031 misst 6—7 cm Durchmesser und ist mit

1--2 cm dicker Hülle von Wurzelfilz bedeckt.

Cyathea Schanschin Mart.

Sta, Catharina: Blumenau, häufiger Farnbaum im Wald, Fr.,

1886 Sept. No. 97 und 176. Die Stämme messen ca. 6 cm im

Durchmesser, sind obwärts nackt, mit elliptischen Blattnarben besetzt,

nach dem Grunde zu dagegen mit mehrere Centimeter dicken Hüllen

von festem Wurzelfilz umgeben. Das Exemplar No. 97 stand in

einer Waldschlucht auf abschüssigem Boden, der Stamm erhob sich

schräg aufsteigend und hatte an seiner Basis nach der Unterseite zu

eine breite, keilförmig zugeschärfte Stützplatte aus Wurzelfilz erzeugt.

Zuweilen erzeugen solche schräg stehende Bäume am unteren Theile

des Stammes auch freie Stützpfeiler aus Wurzelfilz.

Cyathea Gardneri Hook.

Minas: Queluz, Farnbaum an schattigen Bachufern, Fr., 1887

16.4. No. 3722,

Cyathea Schenckiin. sp. Christ.

Arborea. Caudex. ... Rhachi superne inermi, glabrescente,

opaca, brunnea seu nigrescente. Frondibus herbaceis firmulis

bipinnatis utrinque glabris atroviridibus infra vix pallidioribus, pinnis

sessilibus oblongis 30 cent. longis, 8—10 cent. latis acuminatis,

pinnulis sessilibus ligulatis 5—6 cent. longis, 6 millim, latis acutis

nec caudatis, 3 mill. spatio distantibus, circa 25 quoque latere, ultra

mediam laminam incisis, i. e. lamina 2 mill. latitudine intacta, lobis

late ovatis obtusis vix falcatis millimetri spatio distantibus minutissime

crenulatis sive subintegris, 15 ad 20 numero quoque latere pinnulae;

nervulis in pagina inferiore conspieuis, supra occultis, partim furcatis

156 H. Schenck.

paucis: 4-5 pro lobo, soris 4— 5 quoque latere lobi, creberrimis

spissis, a nervo mediali pinnulae fere ad apicem loborum paginam

frondis inferiorem compacto indumento rufo tegentibus, apice

solummodo acuminato pinnulae soris destituto. Soris ®, mill.

diametro, sese tangentibus, ochraceo-rufis, globosis, indusio undique

clauso circumdatis. Indusio bullato scarioso pallide-flavo, cellulis

valde undulatis constituto, mox in lacinias irregulares abeunte,

cupulam persistentem haud efformante.

Unterscheidet sich von den übrigen brasil, Cyatheen durch die

kurzen Pinnulae und die kurzen Loben mit wenigen Nervillen, von

der C. arborea Smith durch die weichen, nicht starren und nicht

mit einer Oeffnung an der Spitze dehiscenten, sondern zuerst völlig

geschlossenen und später in unregelmässige Fetzen zerreissenden

Indusien und durch Sori, welche die untere Fläche dicht bedecken;

von C. Gardneri Hook. durch die nicht caudato-acuminaten Pinnulae

und die nicht herablaufenden Loben.

Habitus der Alsophila atrovirens Prsl,, aber Loben tiefer ein-

geschnitten.

Hab. Serra de Ouro Preto, Prov. Minas, Brasil., 1887 7.]4.

No. 3551.

Cnemidaria grandifolia Spr. var. obtusa Kuhn.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, bodenständig

im Wald, Fr., 1887 1.3. No. 2936.

Alsophila Taenitis Kze.

Sta. Catharina: Blumenau, Farnbaum im Wald, Fr., 1886 18.9.

No. 320. — Rio de Janeiro: Im Wald am Corcovado, Fr., 1886

Dec. No. 1763.

Alsophila Miersii Hook.

Rio de Janeiro: Farnbaum im Wald an der Tijuca bei Rio, Fr.,

1837 21.]1. No. 2196.

Alsophila arbuscula Presl,

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, Farnbaum im

Wald, Fr., 1887 28./2. No. 2932.

Alsophila paleolata Mart.

Rio de Janeiro: Corcovado, Farnbaum im Wald, Fr., 1886 Dec.

No. 1755; Serra dos Orgäos, Theresopolis, Fr., 1887 22.2. No. 2602.

Alsophila armata Mart.

Sta. Catharina: Blumenau, Farnbaum im Wald, 1886 6.10.

No. 508. — Rio de Janeiro: Corcovado, im Wald, Fr., 1887 26.4.

No. 3764, Serra dos Orgäos, Theresopolis, Fr., 1887 28.2. No. 2933.

Alsophila microdonta Dsv. (— A. ferox Pr.)

Rio de Janeiro: Farnbaum im Wald am Morro do Quitambo bei

Rio, Fr., 1887 4.1. No. 1854.

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Brasilianische Pteridophyten. 157

Alsophila leucolepis Mart.

Rio de Janeiro: Varnbaum im Walde bei Rio, Fr., 1887 18.1.

No. 2117.

Alsophila atrovirens Pr.

Sta Catharina: Itajahy, Farnbaum, häufig an sumpfigen Orten,

Fr., 1886 15.9. No. 21; 12.11. No. 1103. Stamm mit dickem Wurzelfilz.

Alsophila villosa Presl.

Aınas: Sitio, Farnbaum in Camposwäldern, Fr., 1887 20.3.

No. 3201; Congonhas do Campo, bodenständig, Fr., 1887 3.4.

No. 3461.

Polypodiaceae.

1. Dicksonteae (Kuhn und Christ).

Dicksonia Sellowiana Hook,

Sta. Catharina: Serra do Mar bei Joinville, Farnbaum in der

oberen Region und auf dem Plateau der Serra, oft Bestände bildend,

häufig zusammen mit Araucaria brasiliana und Bambusen, Fr., 1886

Nov. No. 1248 u. 1281. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, unterhalb

des Kammes ca. 1900 m, Fr., 1887 26.2. No. 2844. — Die dicken,

mit Wurzelfilz dicht bekleideten Stämme werden von den Colonisten

auf der Serra do Mar hier und dort zu Einfriedigungen verwendet.

Die abgeschlagenen in den Boden eingelassenen Stämme werden zu

diesem Zwecke als Pfähle dicht nebeneinander in Reihen gesetzt, sie

gehen aber nicht zu Grunde, sondern treiben alsdann Adventiv-

knospen und bedecken sich mit neuen Wedelrosetten. Ein mit-

gebrachtes Stammstück misst 15 cm Durchmesser, der eigentliche

Stamm im Innern des Wurzelfilzes und der Blattstielüberreste 8 cm.

Dennstaedtia tenera Mett. — D. cicutaria Moore.

Sta. Catharina: Blumenau, grosser bodenständiger Waldfarn, Fr.,

1886 Oct. 4 No. 983.

Dennstaedtia cornuta Mett.

Sta. Catharina: Blumenau, grosser bodenständiger Waldfarn,

Fr., 1886 Oct. No. 506, 507, 880. — Rio de Janeiro: Corcovado, im

Wald, Fr., 1886 Dec. No. 1770; Serra dos Orgäos, Theresopolis,

häufig im Wald, Fr., 1887 25.2. No. 2780. — :

Bei Blumenau beobachtete ich Exemplare (No. 506), welche in

den Winkeln der Hauptfiedern Adventivknospen mit Wurzeln und

kleinen Blättchen gebildet hatten.

Dennstaedtia rubiginosa Moore.

Sta. ÜUatharina: Blumenau, grosser bodenständiger Waldfarn,

Fr., 1886 Sept., Octob. No. 314, 402.

H. Schenck.

2. Davallieae (Kuhn).

Loxoscaphe theciferum Moore. ”

Minas: Araucarienzone der Serra do Picu an der Grenze von

Rio de Jan. und S. Paulo, Epiphytisch. 1886 11.12. No. 1507.

3. Zindsayeae (Kuhn).

Lindsaya virescens Sw.

Sta. Catharina: Desterro, bodenständig im Wald, Fr., 1886 Sept.

No. 32.

Lindsaya bifida Mett.

Sta Catharina: Sio Antonio auf Ilha de Sta. Cath., bodenständig

im Wald an schattigen Stellen, Fr., 1886 7.9. No. 31.

Lindsaya Lancea Mett. (= L. trapeziformis Dry.)

Sta. Catharina: Desterro, bodenständig im Wald, Fr., 1886 5.9.

No. 29,

Lindsaya portoricensis Dsv. (= L. rufescens Kze.)

Sta. Catharina: Joinville, bodenständig im Wald, Fr., 1886 18.11.

No. 1198.

Lindsaya stricta Dry.

Rio de Janeiro: Morro da boa Vista bei Rio, bodenständig im

Wald, Fr., 1886 23.12. No. 1681 forma tenuis 3, bipinnata. — Minas:

Alto da Serra do Ouro branco, am Boden zwischen Vellozia compacta-

Bäumen, Fr., 1887 5.4. No. 3538 forma valida « pinnata; Queluz,

auf den Campos, Fr., 1887 30.3. No 3378 f. valida « pinnata et $

bipinnata; Congonhas do Campo, an schattigen Stellen auf den

Campos, Fr., 1887 3.4. No. 3453 f, valida y tripinnata.

4. Pterideae (Kuhn).

Adiantum denticulatum Sw.

Rio de Faneiro: In Hecken, an Rainen bei Rio, Fr., 1887 4.1.

No. 1877.

Pernambuco: Beberibe, am schattigen Bachufer, Fr., 1887 4.6.

No. 4039.

Adiantum subcordatum Sw.

Minas: Barbacena, in Camposwäldern, hoher Waldfarn, Fr., 1887

25.]3. No. 3287.

Adiantum sinuosum Gardn,

Minas: Congonhas do Campo, auf den Campos, 1887 4./4. No. 3491.

Adiantum trapeziforme L. var. pentadactylon Hk.

Sta. Catharina: Desterro, schattige feuchte Stellen im Wald auf

der Ilha de S. Cath., Fr., 1886 Sept. No. 24, 30.

Adiantum obtusum Dsv. (== A. nervosum Sw.)

Rio de Janeiro: Am Strand der Lagoa de Rodrigo de Freitas,

Fr., 1886 18./11. No. 1624.

Brasilianische Pteridophyten. 159

Adiantum pulverulentum L.

Rio de Janeiro: Serra de Bica, im Wald, Fr., 1887 6.]1. No. 1916.

Adiantum cuneatum Langs. et Fisch.

Sta. Catharina: Desterro, an feuchten Stellen im Wald, Fr

1886 Sept. No 25, 26

Rio de Janeiro: Corcovado, sehr häufig an feuchten Felsen

und Mauern der Wasserleitung, Fr., 1886 31.8. No. 27 u. Dec.

No. 1744. — Minas: Congonhas do Campo, an schattigen Orten,

Fr., 18387 4.4. No. 3503.

Adıiantum curvatum Klfs.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständig im Wald, 1886 30.9. No. 259.

Adıiantum brasiliense Raddi.

Rio de Fanetro: Morros de Corcovado, im Wald, 1886 26.j12.

No. 1683; Rodeio, im Wald, Fr., 1887 4.2 No. 2388.

Cheilanthes radiata R. Br. — Adiantopsis radiata Fee.

Sta. Catharina: Desterro, im Wald bodenständig, 1886 5.9.

No. 28. — Rio de Janeiro: Corcovado, häufig im Wald, Fr., 1886

Dec. No. 1776; Morro da Saudade bei Rio, häufig im Wald, 1887

20.4. No. 1686.

Cheilanthes chlorophylla Sw. — Adiantopsis chlorophyllaFee.

Minas: Queluz, zwischen Camposgesträuch, Fr., 1887 31.3.

No. 3395.

Cassebeera pinnata Klf.

Minas: Alto da Serra do Ouro branco, an trockenen Felsen

zwischen Vellozien, Fr., 1887 14/.4. No. 3704,

Doryopteris sagittifolia J. Sm.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, an Felsen im

Wald, Fr., 1887 28.2. No. 2605.

Doryopteris lomariacea Klotzsch.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, auf Sumpfwiesen

zwischen Sphagnum, Fr., 1887 2.3. No. 2973.

Doryopteris nobilis J. Sm.

Sta. Catharina: Blumenau, am Coqueirenberg im Wald boden-

ständig, Fr., 1886 15.10 No. 638.

Doryopteris varians J. Sm.

Rio de Janeiro: Lagoa de Rodrigo de Freitas bei Rio, an Felsen

am Strand zusammen mit Selaginella rupestris, Fr., 1886 21.12.

No. 1658; in gleicher Weise am Nordfuss des Päo d’assucar, Fr.,

1887 14.3. No. 3072.

a hatt" Tube u.

ae A in uk de

160 H. Schenck.

Doryopteris pedata Brack.

Sta. Catharina: Desterro, an schattigen Orten, im Gebüsch, Fr.,

1886 Sept. No. 68, 70, 72. — Rio de Janeiro, Corcovado, feuchte

Felsen an schattigen Orten, Fr., 1886 Dec. No, 1751 und 1887 26./4.

No. 3762.

Doryopteris concolor Kuhn = Pellaea concolor Back.

Sta. Catharina: Desterro, an trockenen Stellen, Rainen, Fr.,

1886 12.9. No. 69. — Rio de Janeiro: Corcovado, Fr., 1886 Dec.

No. 1752; Cabo frio, an Mauern, Fr., 1887 4.5. No. 3817.

Pteris paradoxa Kuhn — Cassebeera Fee.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, an Felsen über der Wald-

grenze unterhalb der Campos das Antas, Fr., 1887 26./2. No. 2832.

Pteris aquilina L. var. esculenta Hook.

Rio de Janeiro: Corcovado, am Gipfel an sonnigem Standort,

1886 Dec. No. 1757, 1759; Tijuca bei Rio, häufig am Gipfelfelsen,

1887 21.1. No. 2169; Cabo frio, sehr häufig im Sand der Restinga,

1887 16.5. No. 4000.

Pteris incisa Thbg.

Rio de Janeiro: Serra dos Org .os, Theresopolis im Wald an

offenen Stellen, Fr., 1887 27.2. No. 2895.

Pteris splendens Klf.

Minas: Serra do Picü an der Grenze von S. Paulo und Rio de

Jan., im Wald in der Araucarienregion, Fr., 1886 11.12. No. 1504.

Pteris denticulata Sw. var. brasiliensis Bak.

Sta. Catharina: Desterro, sehr häufiger grosser Farn am Boden

im Wald, Fr., 1886 Sept. No. 66, 67, 71. — Itio de Janeiro: Corcovado,

sehr häufig, bodenständig im Wald 1886 31.8. und 7.12. No. 73

und 1382.

Pteris macroptera Lk.

Sta. Catharina: Blumenau, im Wald, 1886 26.10. No. 825.

Pteris decurrens Pr. Raddi.

Sta. Catharina: Sio Bento, auf dem Hochland, im Wald, 1886

24.11. No. 1275. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis,

im Wald, Fr., 1887 23.2. No. 2715, forma glabra.

Pteris altissima Poir — P. aculeata Sw.

Sta Catharina: Blumenau, schr hoher Waldfarn, Fr., 1886 18.9.

No. 313.

Pteris leptophylla Sw.

Rio de Janeiro: Lagoa de Rodrigo de Freitas bei Rio, im Wald,

Fr., 1887 20.4. No. 1919; Serra de Bica bei Cascadura, Fr., 1887

6.1. No. 1919b.

Zur Beachtung!

Da mehrfach Anfragen erfolgt sind, ob das Repertorium VII,

welches den Elenchus fungorum enthält, einzeln im Buchhandel

zu haben ist, so möchten wir an dieser Stelle darauf hinweisen,

dass ein Separatbezug des Repertoriums durch den Buchhandel

nicht stattfindet und auch für die Zukunft nicht in Aussicht ge-

nommen ist.

Redaction und Verlag der „Hedwigia“.

Anseigen.

Als Separatabdruck aus der forstlich-naturwissenschaftlichen Zeitschrift

erschien:

Dr. K. Freiherr von Tubeuf. Die Haarbildungen der Coniferen.

Mir 12 Tafeln. Preis 2’ M;

M. Rieger’sche Universitätsbuchhandlung,

München, Odeonsplatz 2.

Verlag von R. Friedländer & Sohn, Berlin.

Forschungsberichte

aus der

Biologischen Station zu Plön.

Theil 4. Mit 1 lithographirten Tafel, 45 Textfiguren und 1 Tiefenkarte der

Koppenteiche. Herausgegeben von Dr. O. Zacharias. Berlin 1896. Preis 12 M.

Im Selbstverlage des Herausgebers ist soeben erschienen:

Botaniker-Adressbuch.

(Botanist’s Directory. — Almanach des Botanistes.)

Sammlung

von Namen und Adressen der lebenden Botaniker aller Länder, der

botanischen Gärten und der die Botanik pflegenden Institute, Ge-

sellschaften und periodischen Publicationen.

Herausgegeben von J. Dörfler.

49 Bg. gr.8°. In Ganzleinen gebunden. Preis 10 Mark - 6 fl. — 12,50 Fr. — 10 5 = 2,40 8.

Gegen Einsendung des Betrages franco zu beziehen durch

Jd. Dörfler,

Wien (Vienna, Austria) III, Barichgasse 36.

Begründet 1852 durch Dr. Rabenhorst s

y als

»Notizblatt für kryptogamische Studien.«

ee XXXV. v— 1896, Se Heft 4.

Er Inhalt: H. Schenck, Brasilianische Pteridophyten (Schluss), — P. A. Karsten,

HEDWIGIA.

Kryptogamenkunde

nebst

Repertorium für kryptog. Literatur.

Redigirt

von

Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von

Paul Hennings und Dr. G. Lindau

in Berlin.

Fragmenta mycologica XLIV. — G. Wagner, Mycologische Ausflüge im

Gebiete des g grossen Winterberges in der Sächs. Schweiz II. — Fr. Müller,

Beobachtungen an Nanomitrium tenerum Lindb. — J. Hulting, Beiträge

zur Flechtenflora Nordamerikas. — H. O. Juel, Ueber Accidium Galii

Pers. — J. Bresadola, Fungi aliquot saxonici a cl. W. Krieger lecti. —

P. Hennings, Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I (Anfang).

Dresden,

Druck und Verlag von C. Heinrich.

Erscheint in zweimonatlichen Heften.

Abonnement für den Jahrgang 12 Mark

durch alle Buchhandlungen.

Ausgegeben am ı. August 1896.

An die Leser und Mitarbeiter der

„Hedwigia‘.

Zusendungen und Anfragen redactioneller Art werden unter

der Adresse:

Prof. Dr. G. Hieronymus,

Berlin, Botanisches Museum, Grunewaldstrasse 6/7,

mit der Aufschrift

„Für die Redaction der Hedwigia“

erbeten.

Um eine möglichst vollständige Aufzählung der krypto-

gamischen Literatur und kurze Inhaltsangabe der wichtigeren Arbeiten

zu ermöglichen, werden die Verfasser, sowie die Herausgeber der

wissenschaftlichen Zeitschriften höflichst im eigenen Interesse er-

sucht, die Redaction durch Zusendung der Arbeiten oder Angabe

der Titel baldmöglichst nach dem Erscheinen zu benachrichtigen;

desgleichen sind kurz gehaltene Selbstreferate über den wichtigsten

Inhalt sehr erwünscht.

In Rücksicht auf den Gesammtumfang der Zeitschrift sollen die

einzelnen Abhandlungen die Länge von 3 Bogen im Allgemeinen

nicht überschreiten, desgleichen die einer Abhandlung bei-

zugebenden Tafeln nicht mehr als zwei betragen. Die Original-

zeichnungen für die Tafeln sind im Format 13 x 21 cm mit mög-

lichster Ausnutzung des Raumes und in guter Ausführung zu liefern,

auch sind die Manuscripte nur auf einer Seite zu beschreiben.

Die Autoren erhalten auf Wunsch 25 Sonderabzüge kostenlos,

doch werden solche in beliebiger Anzahl zum Selbstkostenpreis

geliefert.

C. Heinrich’s Verlag.

Brasilianische Pteridophyten. 161

Pteris pedata Kuhn = P. podophylla Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, schr hoher Waldfarn, Fr., 1886 Sept.

No. 148. 190.

Pteris lata Klf. Lk.

Rio de Faneiro: Corcovado, Waldfarn, Fr., 1886 Dec. No. 1756;

)

Serra dos Orgäos, Theresopolis, grosser Waldfarn, Fr., 1887 28.2.

No. 2929,

Lomaria polypodioides Dsv.

Sta. Catharina: Blumenau, im Wald, Fr., 1886 16.10. No. 678;

1.11. No. 924. — Kletterfarn mit dickem, Haftwurzeln tragenden

Rhizom. Wedel an dem Ende des Rhizoms zusammengedrängt, die

fertilen in der Mitte, No. 924 war an einem Farnbaum in die Höhe

geklettert, das Rhizom ganz von dem Wurzelfilz des letzteren eingehüllt.

Lomaria l’Herminieri Bory.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, bodenständig im Wald mit

l cm dickem, aufrechtem Rhizom, Fr., 1887 24.2. No. 2757.

Lomaria tabularis Mett.

Sta. Catharina: Serra do Mar bei Joinville, sehr häufig an

sumpfigen Stellen, Fr., 1886 23.11. No. 1247. — Rio de Janeiro:

Serra dos Orgäos, Campos das Antas auf dem Kamm (ca. 2100 m),

auf sumpfigen Moorboden in grosser Menge, Fr., 1887 26.2. No. 2834.

Der dicke 1—3 Fuss hohe Stamm einfach oder in wenige dicke

Aeste gegabelt, ein Zwergfarnbaum.

5. Plechneae (Kuhn).

Blechnum asplenioides Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, häufig an Wegrändern, Fr., 1886 30.10.

No. 902, var. major Mett. — Minas: Ouro Preto, an Mauern, Fr.,

1887 11.4. No. 3607 var. minor Mett.

Blechnum brasiliense Dsv.

Sta. Catharina: Destero, bodenständig im Wald, Fr., 1886 8.9.

No. 74. — Rio de Jancıro: Corcovado, grosser Waldfarn, Fr., 1886

Dez. No. 1749. — Minas: Queluz, an Bachufern, Fr., 1887 16.4.

No: 3721.

Blechnum longifolium H. B. Kth.

Rio de Faneiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, an Felsen, Fr.,

1887 3.3. No. 2985.

Blechnum occidentale L.

Rio de Janeiro: An Felsen und Mauern bei Rio, Fr., 1886

26.12. No. 1688. — Nlinas: Sitio, Fr., 1887 21.3. No. 3226.

Hedwigia Ba. NXNV. 1896, 11

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162 H. Schenck.

Blechnum serrulatum Rich.

Sta. Catharina: Itajahy, an sumpfigen oder feuchten Orten sehr

häufig, 1886 15.9. No. 75; Fr., 1886 12.11. No. 1097. — Rio de

Janeiro: Restinga von Copacabana bei Rio, auf feuchtem Sandboden

massenhaft, Fr., 1887 10./2. No. 2450, Restinga von Cabo Frio, ge-

sellig an sumpfigen Stellen, Fr., 1887 7.5. No. 3909, — Pernambuco:

Restinga von Boa Viagem bei Recife, sehr häufig und gesellig an

sumpfigen Stellen, Fr., 1887 27.6. No. 4293.

Blechnum striatum Mett.

Sta. Catharina: Blumenau, im Wald, Fr., 1886 29.9. No. 139. —

Minas: Queluz, an Bachufern, Fr., 1887 16.4. No. 3724.

Salpichlaena volubilis J. Sm.

Sta. Catharina: Blumenau, im Wald, Fr., 1886 26.9. No. 90.

Windet mit den aus dem kriechenden Rhizom entspringenden,

sehr langen Wedelstielen bis in die Baumkronen. Ein junger

Wedelstiel mass bereits 4', m und trug die Seitenfieder noch als

eingerollte Knospen.

6. Asplenieae (Kuhn).

Asplenium serratum L.

Rio de Janeiro: Corcovado, an Felsen im Wald, Fr., 1887 15./3.

No. 3089, Serra de Bica bei Cascadura, an Felsen im Wald, Fr.,

1887 6./1. No. 1899,

Asplenium oligophyllum KlIf.

io de Janeiro: Corcovado, bodenständiger Waldfarn, Fr., 1886

Dez. No. 1773; Serra dos Orgäos, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 25.2.

No. 2781.

Asplenium lunulatum Sw. var. majus Mett.

Sta. Catharina: Blumenau, Coqueirenberg, bodenständig im Wald,

Fr., 1886 15./10. No. 637. — Rio de Janeiro: Corcovado, auf Fels-

blöcken im Wald, Fr., 1887 29.4. No. 3793; Serra do Picu an der

Grenze von Minas und S. Paulo, bodenständig, Fr., 1886 11.12.

No, 1516.

Asplenium pteropus Klf.

Sta. Catharina: Blumenau, häufig als epiphytischer Farn auf

Urwaldbäumen, auf modernden Stämmen, Fr., 1886 3./11. No. 960;

6.10. No. 515.

Asplenium obtusifolium L.

Sta. Catharina: Blumenau, stets dicht an Waldbächen oder an

Wasserfällen, wo die Wedel beständig vom Wasser benetzt werden,

steril, 1886 Oct. No. 517, 532.

a ich ae 5 air ul m U een u et Zu STEHEN ne & .

Brasilianische Pteridophyten. 163

Asplenium auritum Sw.

Sta. Catharina: Säo Bento, epiphytisch an Farnbäumen im Wald,

Fr., 1886 25.11. No. 1322. — Io de Janeiro: Serra dos Orgäos,

Theresopolis, auf Felsen oder als Epiphyt im Wald, Fr., 1887 22./2.

No. 2650; 20.2. No. 2561. — Minas: Serra do Picü, in der Arau-

carienzone, Epiphyt an Waldbäumen, Fr., 1886 11.12. No. 1506;

Serra do Ouro Preto, Epiphyt, Fr., 1887 8.4. No. 3588.

Asplenium Serra Langsd. et Fisch.

Jo de Janeiro: Serra dos Orgäos, Buschwald unterhalb des

Kammes, bodenständig im Wald, Fr., 1887 26.2. No. 2842.

Asplenium auriculatum Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, am Salto do Norte des kajahy,

zwischen Moos auf Felsen, Fr., 1886 4.10, No. 381.

Asplenium formosum Willd.

Minas: Ouro Preto, an Mauern, Fr., 1887 11.4. No. 3611.

Asplenium pulchellum Raddıi.

Sta. Catharina: Desterro, im Wald an schattigen Stellen, junge

Pflanze. 1886 7.9. No. 33.

Asplenium mucronatum Pr.

Sta. Catharina. Desterro, epiphytisch an Farnbäumen, die zarten

langen Wedel herabhängend und die Farnstämme dicht umhüllend,

einer der schönsten epiphytischen Farne, Fr., 1886 Sept. No. 57, 58.

Asplenium praemorsum Sw.

Minas: Ouro Preto, epiphytisch oder an Felsen, Mauern, Fr.,

1887 April No. 3566, 3582.

Asplenium scandicinum Klf.

Sta. Catharina: Desterro, epiphytisch an Farnbäumen sehr häufig,

buschig herabhängend, Fr., 1886 Sept. No. 56, 60, 61; Blumenau,

Epiphyt, 1886 Sept. No. 269, 315. — XKio de Janeiro: Serra dos

Orgäos, Theresopolis, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 26./2. No. 2771.

Asplenium adiantoides Raddi.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgios, sehr häufig im Wald am

Boden am Wege von Theresopolis zu den Campos das Antas. Die

Wedel verlängern ihre Spindel und bilden an der Spitze Adventiv-

pflänzchen, Fr., 1887 25.12. No. 2779.

Diplazium plantagineum Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständig im Wald, Fr., 1886

30./9. No. 258. — KRro de Janeiro: Corcovado, bodenständig im

Wald, Fr., 1886 7.12. No. 1384, an dem oberen Ende des Wedel-

stiels unter der Spreitenbasis Adventivpflänzchen erzeugend.

11*

164 H. Schenck.

Diplazium arboreum Pr.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständig im Wald, Fr., 1886

28.10. No. 875.

Diplazium striatum Pr.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständig im Wald, Fr., 1886 Oct.,

Fr. No. 839, 883.

Diplazium radicans Dsv.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos,' Theresopolis, bodenständig

im Wald, Fr., 1887 28.2. No. 2928.

7. Scolopendrieae (Kuhn).

Scolopendrium brasiliense Fisch.

Sta. Catharina: Blumenau, Coqueirenberg, bodenständig im

Wald, Fr., 1886 15.110. No. 633. — Rio de Janeiro: Morro do Säo

Joäo bei Rio, bodenständig im Wald, Fr., 1887 8.1. No. 1951.

8. Aspidieae (Kuhn).

Didymochlaena lunulata Dsv.

Sta. Catharina: Blumenau, grosser bodenständiger Waldfarn, Fr.,

1886 Sept., Oct. No. 316, 629. — Rio de Janeiro: Corcovado, Fr.,

1886 Dec. No. 1758.

Nephrolepis tuberosa Pr. var. occidentalis Kze.

Sta. Catharina: Blumenau, Epiphyt oder auf faulenden Baum-

stümpfen. Wedel oft mehrere Meter lang herabhängend, 1886 Oct.,

Nov. No. 419, 994. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, an Felsen

herabhängend, Fr., 1887 Febr. März No. 2589, 2733, 2996. — Minas:

Am Itacolumi, bei Ouro Preto, an schattigen Felsen, 1887 12./4. No. 3621.

Aspidium muricatum Willd. = Asp. aculeatum Sw.

Minas: Serra do Picu, an der Grenze von S. Paulo und Rio

de Janeiro, in der Araucarienzone, bodenständig, Fr., 1886 11.12.

No. 1503.

Aspidium coriaceum Sw.

Sta. Catharina: \tajahy, häufig, bodenständig, Fr., 1886 15.8.

No. 65. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, epiphytisch,

Fr., 1887 23./2. No. 2689,

Aspidium abbreviatum Schrad.

Rio de Janeiro: Rodeio, Kletterfarn im Wald, mit kriechendem

Rhizom, 1887 4.2. No. 2401.

Aspidium invisum Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständig im Wald, sehr grosse

Wedel, Fr., 1886 16.9. No. 63. — Kilo de Janeiro: Waldfarn bei

Rio, Fr., 1887 27.4. No. 3783.

Brasilianische Pteridophyten. 165

Aspidium falciculatum Raddi.

Rio de Janeiro: Corcovado, bodenständig im Wald, Fr., 1886 Dec.

No. 1684, 1774.

Aspidium Raddianum Mett. = Nephrodium vestitum Bak.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständiger Waldfarn, Fr., 1886

30.9. No. 257.

Aspidium alsophilaceum Kze.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständiger Waldfarn, Fr., 1886

22.110. No. 757.

Aspidium oppositum Sw. = A. conterminum Willd.

Sta. Catharina: Blumenau, am Salto do Norte des Itajahy boden-

ständig, Fr., 1886 20.9. No. 152; Blumenau, an Grasrainen zusammen

mit Mertensien, Aneimia Phyllitidis, Fr., 1886 17.10. No. 707.

Aspidium mexicanum Pr.

Minas: Ouro Preto, an Rainen, Fr., 1887 11.4. No. 3610.

Aspidium denticulatum Sw.

Minas: Serra do Ouro Preto, an schattigen Felsen, Fr., 1887 8.4.

No. 3584.

Aspidium amplissimum Mett.

Sta. Catharina: Serra do Mar bei Joinville, bodenständiger Wald-

farn, Fr., 1886 23.11. No. 1246. — Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos,

Theresopolis, bodenständig im Wald, Fr., 1887 Febr. No. 2599, 2927.

Aspidium unitum Mett. var. hirsuta Mett.

Rio de Janeiro: Rodeio, im Sumpf, Fr., 1887 5.12. No. 2409,

Aspidium macrophyllum Sw.

Sta. Catharina: Desterro, bodenständiger Waldfarn, steril. 1886

8.9. No. 64 forma hirsuta. -—— Rzo de Janeiro: Morros do Corcovado,

Waldfarn, Fr., 1887 12.1. No. 2018.

9. Polypodieae (Kuhn).

Phegopteris flavopunctata Fee = Aspidium rotundatum

Willd.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständiger grosser Waldfarn, Fr.,

1886 Sept. Oct. No. 494, 794.

Phegopteris effusa Fee.

Sta. Catharina: Blumenau, grosser bodenständiger Waldfarn,

1886 Sept. 30. No. 256. — Ko de Janeiro: Corcovado, im Wald,

Fr., 1886 Dec. No. 1771, bildet an der Wedelspindel im oberen

Theile je eine grosse Adventivknospe.

Phegopteris platyphylla Mett.

Rio de Janeiro: Corcovado, grosser bodenständiger Waldfarn,

Fr., 1886 Dec. No. 1775.

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166 H. Schenck.

Phegopteris fulgens Mett. msc.

Itio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, grosser boden-

ständiger Waldfarn, Fr., 1887 1.3. No. 2941,

Phegopteris subincisa Fee.

Sta. Catharina: Blumenau, grosser bodenständiger Waldfarn,

Fr., 1886 27.10. No. 843.

Phegopteris aspidioides Mett. = Gymnogramme asplenioi-

des Klf.

Sta. Catharina: Desterro, im Wald bodenständig, Fr., 1886 12.9.

No. 41; Blumenau, im Wald an Bächen, Fr., 1886 23.9. No. 207.

— dio de Janeiro: Corcovado, an Waldbächen an Felsen, Fr., 1887

19.1. No. 2123 und 24.5. No. 4021; Serra dos Orgäos, Theresopolis,

an Waldbächen, Fr., 1887 24.5. No. 2758.

Phegopteris Linkiana Mett.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, an Waldbächen,

Fr., 1887 28,2. No, 2923,

Phegopteris prolifera Mett. = Polyp. diversifolium Sw.

Sta. Catharina: Blumenau, bodenständig im Wald, Fr., 1886

19.9, No. 171, an der Wedelspindel proliferirend; Blumenau, Itoupava-

thal, im Wald, Fr., 1886 28.10. No. 873. — Rio de Janeiro: Corco-

vado, bodenständig im Wald, Fr., 1886 Dec. No. 1748.

Phegopteris rude (Kze.).

Sta. Catharina: Blumenau, Waldfarn, Fr., 1886 15.10. No. 628. —

Nach Dr. Christ wohl nur ein Stadium von Aspidium (Nephrodium)

caripense Mett.

Polypodium organense Mett. = Grammitis organensis Gardn.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Epiphyt in dem Buschwald

unterhalb der Campos das Antas (2100 m) an dem Kamme der

Serra, Fr., 1887 26.2. No. 2833.

Polypodium setosum Mett. — Xiphopteris serrulata KIf.

Sta. Catharina: Desterro, an Felsen am Wasserfall bei Lagoa,

1886 12.9. No. 39; Serra do Mar bei Joinville, Epiphyt, 1886 23,11.

No. 1243; Campo Alegre, auf dem Plateau der Serra do Mar an der

Strasse Joinville-Säo Bento, dichte Polster an Felsen am Wasserfall

bildend, 1886 24.11. No. 1298. — Rio de Janeiro: Corcovado, feuchte

Felsen an der Wasserleitung, 1886 Dec. No. 1746; Serra dos Orgäos,

an Felsen häufig bei Theresopolis, 1887 20.2. No. 2569. — Minas:

Serra do Ouro Preto, häufig an Felsen, 1887 8.4. No. 3593,

Polypodium moniliforme Lag.

Minas: Ouro Preto, an Felsen am Gipfel des Itacolumi, Fr.,

1887 12.4. No. 3648.

Brasilianische Pteridophyten. 167

Polypodium brevistipes Mett.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, Epiphyt ım

Wald, Fr., 1887 23./2. No. 2700.

Polypodium asplenifolium L.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Epiphyt in dem Buschwald

unterhalb der Campos das Antas (2100 m) am Kamm des Gebirges,

Fr., 1887 26.2. No. 2840.

Polypodium pilosissimum Mart. et Gal. (det. Christ.)

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Epiphyt im Wald bei Thereso-

polis, Fr., 1887 24.2. No. 2734.

Polypodium taxifolium L.

Rio de Janeiro: Bei Rio an Felsen, Mauern häufig, 1886 Dec.

No. 1369, 1588. — Minas: Congonhas do Campo, Epiphyt in Wäldern,

Fr., 1887 4.8. No. 3495.

Polypodium Glaziovii Baker (det. Christ).

Sta. Catharina: Blumenau, Fr., 1886 26.9. No. 95 und 949.

Epiphyt im Wald, mit Vorliebe an Farnbäumen zusammen mit

Asplenium scandicinum Klf. und Asplenium mucronatum Pr., um-

kleidet die Stämme oft mit dichtem Rasen.

Polypodium pectinatum L.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, an Felsen im Wald bei

Theresopolis, Fr., 1887 24.2. No. 2737. — Minas: Serra do Picu

an der Grenze von S. Paulo und Rio de Jan., in der Araucarienzone,

bodenständig, Fr., 1886 11.12. No. 1513.

Polypodium pectinatum L. var. major Mett. — P. Para-

diseae Langsd. et Fisch.

Sta. Catharina: Desterro, im Wald, Fr., 1886 8.9. No. 34.

Polypodium recurvatum Klf.

Sta. Catharina: VDesterro, bodenständig, Fr., 1886 5./9. No. 50;

Serra do Mar bei Joinville, Fr., 1886 23.11. No. 1237. —- Rio de

Janeiro: Serra dos Orgüos, Felsen im Wald bei Theresopolis, Fr.,

1887 24.2. No. 2732.

Polypodium achilleaefolium KlIf.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Epiphyt im Wald bei Thereso-

polis, Fr., 1887 24.2. No. 2726.

Polypodium vacciniifolium Langsd. et Fisch.

Sta. Catharına: Blumenau, sehr häufig als Epiphyt, Fr., 1886

29,9, No. 140; Desterro, überall häufig als Epiphyt, 1886 5.9. No. 651.

— Parana: Paranaguä, häufig an Bäumen und Mauern, 1886 3.9.

No. 436. — Rio de Janeiro: Lagoa de Rodrigo de Freitas, Epiphyt

an dem Restingagesträuch, Fr., 1886 21.112. No. 1648. — Pernambuco:

Caxangä, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 13.6. No. 4135. — Dieser

168 H. Schenck.

Farn mit seinen langen vielverzweigten, kleine ovale Blättchen

tragenden, kriechenden Achsen überzieht die Stämme und Aeste

seiner Stützbäume mit dichtem Teppich. Er ist neben Tillandsia

usneoides wohl der häufigste Epiphyt an freistehenden Bäumen und

am Gesträuch in den Küstenprovinzen.

Polypodium tectum KlIf.

Sta. Catharina: Desterro, auf Steinen und an Bäumen an einem

Wasserfall bei Lagoa, Fr., 1886 12.9. No. 37. — Rio de Janeiro:

Corcovado, an Felsen im Schatten, Fr., 1887 26.4. No. 3765; Serra

dos Orgäos, Theresopolis, Epiphyt, Fr., 1887 22./2. No. 2610.

Polypodium latipes Langsd. et Fisch.

Sta. Catharina: Desterro, an Felsen, Fr., 1886 11.9. No. 40,

Epiphytisch auf Baumfarnen, deren Stämme mit dicken Rhizomen

schlangenartig umkriechend, Fr., 1886 5.9. No. 48; Blumenau, epi-

phytisch kriechend, Fr., 1886 28.9. No. 100. — Rio de Janeiro:

Corcovado, Epiphyt, Fr., 1886 Dec. No. 1765; Restinga, an der Lagoa

de Rodrigo de Freitas, sehr häufig in Sandboden, Fr., 1886 21.12.

No. 165la. — Minas: Sitio, Epiphyt auf Camposbäumen, Fr., 1887

23./3. No. 3264; Serra do Pici, Epiphyt 1886 11.12. No. 1502.

Polypodium menisciifolium Langsd. et Fisch.

Sta. Catharina: Desterro, an Granitfelsen am Strand, Fr., 1886

6.9. No. 35.

Polypodium brasiliense Poir.

Rio de Janeiro: An Felsen im Wald bei der Lagoa de Rodrigo

de Freitas bei Rio, Fr., 1886 15.12. No. 1626; Restinga bei dieser

Lagoa, sehr häufig in Sandboden, Fr., 1886 21.12. No. 1651b; Cabo

Frio, sehr häufig im Sandboden der Restingavegetation, Fr., 1887 8.5.

No. 3926.

Polypodium rhizocaulon Willd. — P. fraxinifolium Jacq.

Sta. Catharina: Blumenau, Epiphyt in den Kronen der Wald-

bäume, oder auf den Stämmen kriechend 1886 Oct., Fr., No. 296 u.

540. — Hio de Janeiro: Serra dos Orgäos, häufig im Wald bei

Theresopolis epiphytisch 1887 Febr. No. 2740, 2763, 2930.

Polypodium incanum Sw.

Rio de Janeiro: Corcovado, Epiphyt 1886 31.8. No. 48; Lagoa

de Rodrigo de Freitas bei Rio, an Felsen oder als Epiphyt 1886

Dec. u. 1837 April No. 1625; Cabo Frio, an Mauern 1887 4.5 No. 3818.

Polypodium Lepidopteris Kze.,

Sta. Catharina: Desterro, auf Granitfelsen am Strand, an Mauern,

auch epiphytisch 1886 Sept. No. 47, 51; Blumenau, Epiphyt in den

höchsten Kronen der Waldbäume, Fr., 1886 2.10. No. 294, Säo

Bento, Epiphyt, Fr., 1886 25.11. No. 1330; Restingavegetation bei

Brasilianische Pteridophyten. 169

Itajahy, bodenständig in Sand massenhaft zusammen mit Aspidium

coriaceum, Fr., 1886 14.11. No. 1134. — Parana: Parnaguä, epiphytisch

auf Gesträuch, Fr., 1886 3.9. No. 45. — Rio de Janeiro: Corcovado,

Epiphyt im Wald, Fr., 1886 Dec. No. 1766: Serra dos Orgäos

Theresopolis, Epiphyt im Wald, Fr., 1887 24.2. No. 2741. — Minas:

Serra do Picü, an Felsen, Fr., 1886 11.12.

Polypodium areolatum Willd.

MMinas: Ouro Preto, an Mauern, feuchten Felsen, Fr., 1887 April

No. 3574, 3606.

Polypodium leucatomos Willd.

Pernambuco: Ponte d’Uchoa bei Recife, Epiphyt an einer Palme

zwischen den Wedelstielresten, Fr., 1887 6.6. No. 4070.

Polypodium angustifolium Sw. var. 3. taeniosum Moore.

Sza. Catharina: SioBento, Epiphytim Wald 1886 25.11.N0.1335. —

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis, Epiphyt im Wald,

Fr., 1887 24.2. No. 2730.

Poiypodium lapathifolium Lam.

Rıo de Janeiro: Corcovado Fpiphyt oder an morschen Baum-

stämmen, Fr., 1886 Dec. No. 1753; Serra dos Orgäos, Theresopolis

Epiphyt, Fr., 1887 22.2. No. 26053.

Polypodium Phyllitidis L.

Sta. Catharina: Desterro, am Boden im Wald, bildet grosse

Wurzelpolster, Fr., 1886 5.9. No. 42; Blumenau, an feuchten Felsen

im Wald in dichten Büscheln, Fr., 1886 29.9. No. 135. — Rio de

Janerro: Corcovado, Epiphyt im Wald, Fr., 1886 7.112. No. 1383.

Polypodium repens Aubl.

Sta. Catharina: Blumenau, Itoupavathal, Epiphyt im Wald 1886

25.110. No. 888. — Fo de Janeiro: Theresopolis in der Serra dos

Orgäos, an Felsen 1887 24.2. No. 2736.

Polypodium decurrens Raddi.

Jo de Janeiro: Corcovado, bodenständig im Wald 1886 Dec.

No. 1750.

Polypodium squamulosum KIf.

Sta. Catharina: Blumenau, sehr häufiger Epiphyt mit kriechenden

Achsen, Fr., 1886 2.10. No. 297, Campo Alegre auf dem Plateau

der Serra do Mar bei Joinville am Wasserfall, Fr., 1886 24.111. No. 1297 ;

Jo de Janeiro: Serra dos Orgäos, häufig als Epiphyt bei Theresopolis,

Fr., 1887 Febr. No. 2565, 2592, 2624.

Polypodium lanceolatum L.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis Epiphyt, Fr.,

1887 21.2. No. 2563. — Minas: Serra do Ouro Preto, Epiphyt, Fr.,

1887 8.4. No. 3589,

ce,

i aa Big en ki ee u Be

ie ie hihi nn sign ah a ira un hi = „aan a bite an en ni. FE ee un

170 H. Schenck.

Polypodium elongatum Mett.

Sta. Uatharina: Blumenau, Epiphyt, Fr., 1886 2./10 No. 295. —

Parana: Paranaguä, Epiphyt, Fr., 1886 3.9. No. 36. — Kto de Janeiro:

Serra dos Orgios, Theresopolis Epiphyt, Fr., 1887 21.2. No. 2564.

Polypodium percussum Cav.

Sta. Catharina: Blumenau, Epiphyt oder an Felswänden im Wald,

Fr., 1886 29.9. No. 136; 2.10. No. 298. — Parana: Paranaguä, an

Mauern, Fr., 1886 2.10. No. 44. — dHio de Janeiro, Morro do

Quitambo bei Rio, Epiphyt oder an Mauern, Fr., 1887 4.]11. No. 1871.

Polypodium crassifolium L.

Sta. Catharina: Sio Bento, Epiphyt im Wald, Fr., 1886 25.11.

No. 1321. — Rio de Janeiro: Tijuca, an Felsen, Fr., 1887 21.1.

No. 2187; Serra dos Orgäos, Theresopolis, an Felsen im Wald, Fr.,

1887 24.2. No. 2746.

Polypodium angustum Mett.

Sta. Catharina: Desterro, Epiphyt, Fr., 1886 12.9. No. 38;

Blumenau, Epiphyt, überall häufig auf Bäumen, auch auf Salix

Humboldtiana an Flussufern, Fr., 1886 21.10. No. 764. — Farana:

Paranaguä, sehr häufiger Epiphyt, Fr., 1886 3.9. No. 52. — Fo de

Janeiro: Corcovado, Epiphyt, Fr., 1886 Dec. No. 1767.

10. Gymnogrammitideae (Kuhn).

Hemionitis tomentosa Raddi.

Rio de Janeiro: Häufig auf den Bergen bei Rio, bodenständig

im Wald, Fr, 1886 31.8. No. 59; 17.112. No. 1587; 1887 11.1.

No. 1999,

Gymnogramme chaerophylla Dsv.

Sta. Catharina: Desterro, bodenständig, Fr., 1886 5.9. No. 22;

Blumenau, bodenständig im Wald, Fr., 1886 28.10. No. 872. —

Rio de Janeiro: Corcovado, feuchte Felsen an der Wasserleitung,

Fr., 1886 Dec. No. 1743.

Psilogramme myriophylla Kuhn = Gymnogramme m. Sw.

Minas: Serra do Ouro Preto, bodenständig, Fr., 1887 7.4. No. 3554.

Ceropteris trifoliata Kuhn.

Minas: Ouro Preto, bodenständig, Fr., 1887 9.4. No. 3598.

Ceropteris Calomelanos Lk.

Sta. Catharina: Desterro, sehr häufig an trockenen Orten, Weg-

rändern, Rainen zusammen mit Lycopodium cernuum, Mertensien,

Fr., 1886 Sept. No. 76, 77, 78; Blumenau in gleicher Weise, Fr.,

1886 18.9. No. 146. — Minas: Ouro Preto, Fr., 1887 11.4.

Meniscium serratum Cav.

Rio de Janeiro: Mauä, an der Bai von Rio, an sumpfigen Stellen

in der Restinga, Fr., 1887 16.1. No. 2052, 2057,

Brasilianische Pteridophyten. 171

11. Vittarieae (Kuhn).

Vittaria Gardneriana Fee.

Juo de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis an Felsen, Fr.

1887 22.2. No. 2613.

Vittaria lincata Sw.

Sta, Catharina: Desterro, Epiphyt auf Bäumen, Fr., 1886 Sept.

No. 53, 54; Blumenau, Epiphyt an Farnbäumen, Fr., 1886 27./10.

No. 840.

Vittaria graminifolia KlIf.

Tito de Janeiro: Serra dos Orgäos, Epiphyt bei Theresopolis,

Fr., 1887 22.2. No. 2601. — Paraphyses clavatae, sporae tetraedrico-

globosae (Kuhn).

Pleurogramme seminuda Kuhn.

Jio de Janeiro: Serra dos Orgäos, Theresopolis an Felsen, Fr.,

1887 21.2. No. 2572, Serra do Picüu, an Felsen, Fr., 1886 12.12.

No. 1431.

Antrophyum lanceolatum KlIf.

Si/a. Catharina: Desterro, an Felswänden im Wald bei S. Antonio,

Wurzelpolster bildend, Fr., 1886 7.9. No. 62.

12. Acrosticheae (Kuhn, Acrostichum Christ).

Acrostichum conforme Sw. var.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, sehr häufig als Epiphyt in

dem Buschwald unterhalb der Campos das Antas (2100 m), Fr.,

1887 26.2. No. 2841.

Acrostichum Lingua Raddi.

Sta, Catharina: Blumenau, Epiphyt auf Waldbäumen, steril, 1886

12.10. No. 613; Joinville, an Felsen sehr häufig in der Serra do Mar,

Fr., 1886 23/11. No. 1261. -—- Jo de Janeiro: Serra do Picü, an

Felsen, Fr., 1886 12.112. No. 1429,

Acrostichum latifolium Sw.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, epiphytisch oder auf Felsen

in dem Buschwald unterhalb der Campos das Antas (2100 m), Fr.,

1887 26.2. No. 2843.

Acrostichum viscosum Sw.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgäos, an der Strasse nach Thereso-

polis, am Boden zwischen Gesträuch, Fr., 1887 21.]2. No. 2567.

Acrostichum acrocarpum Mart.

Sta. Catharina: Joinville, Epiphyt, junge Pflanze, 1886 19.11.

No. 1219,

öde nn. 0.00... 5 Ze

172 H. Schenck.

'Acrostichum Aubertii Dsv.

Rio de Janeiro: Serra dos Orgi\os, in der oberen Waldregion,

Fr., 1887 25.2. No. 2804. — Minas: Serra do Picü, Epiphyt auf

Bäumen in der Araucarienzone, Fr., 1886 11.112. No. 1512.

Acrostichum tectum Willd.

Minas: Serra de Ouro Preto, an Felsen, Fr., 1887 7.4. No. 3546.

Acrostichum striectum Raddi.

Minas: Serra do Ouro Preto, an Felsen, 1887 8.4. No. 3567.

Lomariopsis scandens Mett.

Sta. Catharina: Desterro, epiphytisch kletternd, 1886 5.9. No. 49;

Blumenau, hochkletternder Farn, am Stützbaum mit Adventivwurzeln

befestigt, Fr. 1886 Sept.-Oct. No. 92, 634.

Lomariopsis marginata Kuhn = L. sorbifolia Mett.

Sta. Catharina: Blumenau, Kletterfarn im Wald, mit dickem

Rhizom, umwindet kleinere Stämme, kriecht gerade an dicken

empor, steril, 1886 26.9. No. 89,

Polybotrya osmundacea H. B. Kth.

Sta. Catharina: Blumenau, Kletterfarn mit dickem Rhizom, an

dicken Stämmen gerade, an dünnen spiralig aufsteigend, mit Haft-

wurzeln befestigt, Fr., 1886 Sept. No. 91, 150.

Polybotrya cervina Klf. forma corcovadensis Raddi.

Rio de Janeiro: Corcovado, bodenständig im Wald, Fr., 1887 19.1.

No. 2122; Morro do Quitambo bei Rio, feuchte, schattige Stelle, junge

Pflanze, 1887 4.1. No. 1862.

Polybotrya cervina KlIf.

Sta. Catharina: Blumenau, hoher stattlicher Waldfarn, 1886 23.9.

No. 485.

Chrysodium aureum Mett.

Sta. Catharina: Desterro, in grosser Menge im Manguesumpf von

S. Luiz, Fr., 1886 9.9. No. 79. — Rio de Janeiro: Lagoa de Rodrigo

de Freitas, am Strand, Fr., 1886 18.112. No. 1623; Cabo Frio, in

Manguesümpfen häufig, Fr., 1887 9,5. No. 3958.

Bonn, December 1895.

2 ,% 27 MN

Fragmenta mycologica XLIV.

Auctore P. A. Karsten.

Polyporellus melanopus (Pers.) Karst. * P. Hisingeri n.

subsp. — A typo differt: pileo majore ct crassiore (13 cm lato,

2,5 cm crasso), pallidiore (alutaceo-pallenta), glabro, stipite aequali,

pallidiore (brunneo), 3 cm longo, 2 cm crasso, porisque duplo triplove,

majoribus, pallidis, exsiccando luteis sporae.

Ad terram in horto Fagervikensi par. Karis Fenniae (Baron E.

Hisinger).

Kneiffia nivea n. sp. — Orbiculari-effusa, flocculoso-submem-

branacea, crustoso-adnata, tenuis, indeterminata, nivea, verrucis con-

fertis, brevissimis, inaequalibus, conoideis vel setiformibus, superne

ciliatis. Sporae sphaeroideae vel cllipsoideo-sphaeroideae, uniguttu-

latae, 5X4 mmm vel 3-4 mmm diam. Hiyphae ramosae, articulatae,

unilateraliter nodosae, 2--4 mmm crassae.

Supra corticem betulae in agro Mustialensi.

Hydnellum n. gen. — A Kneiffia sporis aculeatis diversum.

H. subtile Karst. Syn. Kneiffia subtilis Karst. — Sporae

sphaeroideae, longe aculeatae, 5—11 mmm diam.

Grandinia fugax n. sp. — Orbiculari-vel elongato -effusa,

membranacea, pertenuis, facıllime solubilis, nivea, rosceo-maculata,

ambitu subtiliter fimbriatulo, hyalino, granulis rotundatis, confertis

vel confertissimis. Sporae ellipsoideae, hyalinae, 4—8 X 3—4 mmm.

Hyphae ramosae, remote articulatae, ad septa unilateraliter nodulosae,

hyalinae, 1—5 mmm crassae.

In ligno putrescente Piceae excelsae ad Mustiala, m. Nov. 1895.

Hymenochaetella rudis n. sp. — Longitudinaliter effusa,

adnata, mox floccoso-grumosa, arida, crassa, determinata, inaequabilis,

obscure ferruginea, setis acutis, strictis, ferrugineis, usque ad 100 mmm

longis et 10 (basi) mmm crassis conspersa, demum in areolas frustu-

latas dirupta.

In cortice Alni incanae prope Mustiala.

Hymenochaetellae unicolori (Berk.)affınis, forte ejus varietas.

Bo Eu 3. dia me Di 6 DE

ka an nl 2 re dell Bali ulerl nn ab > in, a a un ln ie a oe he a &

174 | P. A. Karsten.

Hymenochaetella fusca n. sp. — Longitudinaliter effusa,

adnata, grumosa, arida, determinata, contigua, laevis, fusca, setis

acutis, strictis ferrugineis, usque ad 80 mmm longis et 8 mmm

(basi) crassis obsessa.

In ligno vetusto in Suecia media legit amicissimus K. Starbäck.

Hymenochaetellae corrugatae proxime accedit.

Corticium byssinum Karst. — Longe lateque effusum, indeter-

minatum, adhaerens, byssinum, tenerrimum, ambitu similari, hymenio

tenuissimo, ceraceo, contiguo, laevi, caesio-albo. Sporae sphaeroideae,

eguttulatae, 4 mmm diam. DBasidia clavata, 8—12 X 4 mmm.

Hyphae tenerrimae, ramosae, articulatae, 3—4 mmm crassae.

Supra corticem Piceae excelsae ad Mustiala m. Nov.

. Hypochnus microsporus .n. sp. — Effusus, tenuis, adnatus,

tomentoso-submembranaceus, mollis, immarginatus, argillaceo-vel

ferruginascente cinnamomeus, ambitu subtusque byssinus albicans,

papillis hinc inde conspersus. Sporae sphaeroideae, minute aculeo-

latae, subfuligineo-hyalinae, 4—6 mmm diam. Basidia clavata,

6-9 mmm crassa. Hyphae ramosae, articulatae, unilateraliter nodu-

losae, 4—7 mmm crassae.

Supra corticem Alni incanae cis Mustiala.

Coniophora betulae n. sp. — Effusa, tenuis, indeterminata,

tomentosa, ambitu subsimilari, sulphureo-spadicea. Sporae ellipsoi-

deae, uniguttulatae, flavae, laeves, 10—12X6--8 mmm. Hyphae

tenerae, fragiles, hyalinae, 2—3 mmm crassae.

In cortice betulae prope Mustiala.

be:

Mycologische Ausflüge

im Gebiet des grossen Winterberges in der

Sächs. Schweiz.

Von G. Wagner, Schmilka.

In Band XXXIV Jahrgang 1895 pag. 210 dieser Zeitschrift wies

ich auf den grossen Pilzreichthum meines Gebietes hin. Mehrfachen

Aufforderungen nachkommend, sollen nach und nach weitere Auf-

zeichnungen veröffentlicht werden. Für diesmal berücksichtige ich

nur die Mollisien und zwar nur solche, welche auf der Höhe des

grossen Winterberges selbst gesammelt wurden.

Wir haben hier neben jüngerer Fichtenpflanzung besonders

Buchen- und gemischte Waldung. Ausser vorwiegend Fagus sil-

vatica L. begegnen wir mehr oder weniger Acer p$Seudoplatanus L.,

Fraxinus excelsior L., Quercus pedunculata Ehrh., Alnus glutinosa

Gaert., Carpinus Betulus L., auch Populus tremula L., Salix caprea

L., Betula verrucosa Ehrh. und Sorbus aucuparia Gaert. Auch fehlt

es nicht an alten Tannen und Fichten, Abies pectinata DC. und

Picea excelsa Link. An den felsigen Abhängen gedeiht neben

einigen der genannten Laubbölzer besonders die Kiefer, Pinus

silvestris L.

Der Sandstein ist auf der Höhe des Berges vom Basalt durch-

brochen; infolge dessen herrscht der fette basalthaltige Lehmboden

vor, der auch in heisser, trockener Zeit seine Feuchtigkeit sehr

lange behält. Im Allgemeinen sind ja sonst im Elbsandsteingebirge

die Waldungen trockener denn anderswo. Dazu kommt noch, dass

in den hiesigen Waldungen Laub und Nadeln liegen bleiben und

kleinere und grössere Aeste und Stämme überall in Menge ungestört

der Verwesung anheimfallen. Somit sind ja die Hauptbedingungen

für ein reiches Pilzleben geschaffen, so dass der aufmerksame Be-

obachter zu allen Jahreszeiten eine Menge der prächtigsten Arten

auffinden kann.

In einem der jüngeren Mischbestände bemerken wir am Wurzel-

hals abgestorbener Rothbuchen ziemlich häufig die ausgedehnten

Lager des Melogramma spiniferum (Wallr.), welches in diesem Be-

176 G. Wagner,

stande in den letzten Jahren geradezu epidemisch auftrat, so dass

man fast der Meinung werden möchte, dass man es hier mit einem

unter Umständen recht gefährlichen Feind der Buche zu thun hat.

Auf genanntem Pyrenomyceten wächst nun in den Herbstmonaten

bis zum Eintritt des Frostes das schöne Belonidium pruinosum

(Jerd.) Rehm, Discomyc. pag. 562') in ziemlicher Menge. Ich fand

dasselbe auch sowohl parasitisch als saprophytisch auf Diatrype

Stigma (Hoffm.), Diatrype disciforme (Hoffm.), Diatrypella nigro-

annulata Grev., Valsa flavovirescens (Hoffm.), Hypoxylon cohaerens

(Pers.), dann auch auf nacktem Holz noch stehender, lebender

Buchen, sowie sehr schön auf einem im feuchten Laube liegenden,

berindeten Stämmchen von Fraxinus excelsior. Sein Vorkommen

auf noch vielen anderen Substraten ist somit als sehr wahrscheinlich

anzunehmen

Auf faulenden Aesten von Alnus glutinosa sehen wir die nicht

allzuselten 10 bis 20 cm langen und mehr oder weniger aus-

gebreiteten braunen Hyphenlager mit den Apothecien von Tapesia

fusca (Pers.) (Rehm. ]. c. pag. 579; Schröter Pilze II pag. 101) sowie

dazwischen Gruppen der hyphenlosen Mollisia benesuada (Tul.)

(Rehm I. c. pag. 513).

Tapesia cinerella Rehm |. c. pag. 575 und Tapesia

melaleucoides Rehm pag. 578 wachsen gar nicht so selten an

stärkeren, abgestorbenen Stämmchen und Aesten von Calluna vulgaris

Salisb., die im feuchten Moose liegen oder von leichter Humusschicht

bedeckt sind.

Unter gleichen Verhältnissen finden wir an durch Eichhörnchen

entschuppten Zapfen von Picea excelsa Tapesia Riccia Sacc.

(Rehm 1. c. pag. 575) und Tapesia lividofusca var. fallax

(Desm.) Rehm pag. 577. Abgestorbene noch stehende Aeste von

Rosa canina L. sind oft über und über vom Hyphenfilz der Tapesia

Rosae (Pers.) (Rehm pag. 581) überzogen, deren Apothecien aller-

dings nur unter sehr günstigen Witterungsverhältnissen zu voller

Entwickelung zu kommen scheinen. Am besten ist es, man legt die

Aeste zwischen feuchtes Moos, worauf sich die Apothecien in kurzer

Zeit regelmässig ausbilden. Einmal fand ich darauf zugleich die

schöne Velutaria rufo-olivacca (Alb. et Schwein.) Rehm |. c

pag. 646, Schröter II pag. 138).

Faulende Stöcke, besonders aber derartige Holzstücke von Fagus

sind das gewöhnlichste Nährsubstrat für Mollisia cinerea (Batsch)

!) Ref. beruft sich nur auf Rehm'’s Bearbeitung der Discomyceten in

Rabenhorst-Winter, Kryptogamentlora, und auf Schröter, Kryptogamenflora

von Schlesien, Pilze, deren Besitz ja bei jedem Mycologen vorausgesetzt werden

kann, während die (uellenschriften oft nur schwer zugängig sind und die

Diagnosen daselbst manchmal recht viel zu wünschen übrig lassen.

5%:

Mycologische Ansflüge etc. 177

(Rehm I. c. pag. 514, Schröter II pag. 104). Es lohnt sich, solche

halb im Waldboden liegende Holzstücke recht genau zu untersuchen,

manch hübscher Discomycet ist zugleich darauf zu finden, so z.B. die

seltene, allerdings sehr leicht zu überschende Patinella sanguineo-

atra (Rehm I. c. pag. 311). M. cinerea kommt auch auf einigen

anderen Gehölzen vor, besonders auf Quercusästen, hier zugleich

mit Mollisia caespititia Karsten (Rehm |. c. pag. 512).

Veraltete Apothecien von Clithris quercina (Pers.), die man ja

fast an allen abgefallenen Eichenästen bemerkt, sind nicht selten

bedeckt von Mollisia crumenuloides Rehm I. c. pag. 521.

Alte Kräuterstengel, vorzüglich Epilobium angustifolium L.,

Prenanthes purpurea L. und Lilium Martagon L., tragen nicht allzu-

selten die blasse und darum leicht zu übersehende Mollisia minutella

(Sacc.) Rehm I. c. pag. 525, während uns an Cirsium palustre die

die durch ihre gelbgrüne Farbe ausgezeichnete Mollisia Teucrii

(Fckl.) Rehm I. c. pag. 524 ins Auge fällt.

An faulenden Blättern von Betula verrucosa vegetirt einen grossen

Teil des Jahres hindurch die ziemlich verbreitete Mollisia betulicola

(Fckl.) (Rehm 1. c. pag. 538, Schröter II pag. 106), an alten Frucht-

zapfen von Alnus glutinosa dagegen neben verschiedenen Helotien

die besonders im Spätherbste schön entwickelte Mollisia amenti-

cola (Sacc.) (Rehm I. c. pag. 540, Schröter II pag. 105).

Werfen wir bei Gelegenheit einen Blick auf feuchte Sandstein-

wände, so finden wir hier die hübsche Mollisia Jungermanniae

(Nees) Rehm p. 548 auf verschiedenen Lebermoosen, auf welche

mich zuerst Freund Krieger in Königstein, der bekannte Herausgeber

der „Fungi saxonici“, durch die schon eine gewaltige Anzahl zum

Theil sehr seltener Pilze aus der sächs. Schweiz verbreitet worden

sind, aufmerksam machte, wie auch auf Trichobeloniumobscurum

Rehm I. c. pag. 590, das zugleich mit obengenannten Tapesiaarten

und mit Mollisia cinerea an morschen, feuchtliegenden Wurzeln und

Aesten von Calluna vorkommt.

Von Pyrenopezizen treten auch einige Arten ziemlich beständig

auf, so die bekannte und ihrer Nährpflanze oft recht schädliche

Pseudopeziza Trifolii (Bernh.) (Rehm 1. c. pag. 597, Schröter

pag. 110) auf verschiedenen Kleearten, Fabraea Ranunculi (Fr.)

(Rehm I. c. pag. 601, Schröter pag. 111) besonders auf Ranunculus

repens, weiter Pyrenopeziza Rubi (Fr.) (Rehm pag. 611, Schröter

pag. 113) fast überall auf abgestorbenen Ranken von Rubus Idaeus,

Pyrenopeziza compressula Rehm (l. c. pag. 618, Schröter

pag. 114) auf dürren Stengeln von Lotus corniculatus L.; sodann

Pyrenopeziza nigrella Fckl. (Rehm pag. 627, Schröter pag. 115)

zugleich mit Pirottaea gallica Sacc. (Rehm pag. 636 Schröter

Hedwigia Ba, XXXV. 1896. 12

Be iin ce Zn eine a en > a a A an tes a a en u

is u re + le er re äh a Mir nt a Ba Ar u

178 G. Wagner.

pag. 119) und Pirottaea Veneta Sacc. et Speg. (Rehm pag. 637

Schröter pag. 119) auf verschiedenen faulenden Kräuterstengeln,

besonders im Frühjahr auf Senecio Fuchsii Gmel.

Eins der interessantesten Vorkommnisse aus dieser Gruppe war

aber Beloniella Wagneriana Rehm nov. spec. (Discomyc.

pag. 1230). Aus importirtem Samen erzogene Pflanzen von Opuntia

Rafinesquii Engelm. pflegte ich längere Jahre in meinem Garten, und

hatte ich auch eine Anzahl Exemplare an einem geschützten Abhange

des grossen Winterberges ausgepflanzt, wo dieselben auch ganz

prächtig gediehen und den Winter gut überdauerten. Einzelne

Glieder bekamen öfters während des Sommers gelbbraune, trockene

Flecken und faulten dann jedes Frühjahr. Im Spätsommer erschienen

auf ihnen eingesenkte 0,2—0,3 mm im Durchmesser haltende Sper-

mogonien mit winzigen farblosen Spermatien. Im zweiten Jahre

bildeten sich dann ca. 2 mm lange, unregelmässig gestellte, oftmals

verbogene, eingewachsene, oben schwarze, kohlige Apothecien, die

sich erst spät längsspaltig öffneten und die gelblichgraue zuletzt

mehr weniger schüsselförmige zartberandete Fruchtscheibe hervor-

treten liessen.

Leider waren die Pflanzen sammt den dabei ausgelegten Stücken

eines Tages auf noch unerklärte Weise verschwunden, ehe ich den

wahrscheinlich importirten Pilz, dem sicher späterhin ein anderer

Platz im System anzuweisen ist, in grösserer Anzahl für ein Exsiccaten-

werk sammeln konnte.

10. Januar 1896.

Beobachtungen an Nanomitrium

tenerum Lindb.

Von Fr. Müller,

Eine Abhandlung aus Göbel’s Archegoniatenstudien „Ueber

die Sporenausstreuung bei den Laubmoosen“,') in welcher der Ver-

fasser auch Untersuchungen über das lange Zeit als cleistocarp

angesehene Nanomitrium tenerum mittheilt, veranlasste mich gegen

Mitte October vorigen Jahres, lebendes Material dieses für Deutsch-

land äusserst seltenen Mooses vom schlammigen Ufer des Mühlen-

teiches bei Varel, wo ich es im August 1893 entdeckte,?) zu holen,

um namentlich die von Göbel angeregte Frage „ob die sporogonen

Zellen alle fertil werden oder ob in deren Centrum eine rudimentäre

Columella auftritt‘“ (pag. 463) zur Entscheidung zu bringen. Soviel

Mühe ich mir nun auch bei der Beobachtung ganz junger Stadien

der Kapseln dieses Mooses gegeben habe, ist es mir doch nicht

gelungen, eine Columella zu entdecken: immer fand ich entweder

den Embryo noch wenig entwickelt, oder aber die Kapsel war

bereits in die einschichtige Zellwand und die Sporen differenzirt,

Zustände wie sie ausführlich schon von Philibert beschrieben

worden sind.?) Letzterer hat seine vortrefflichen Beobachtungen an

in Frankreich gesammelten und Breutel’schen Pflanzen dieser Species,

sowie an einigen amerikanischen Arten gemacht; er hat das ver-

wandtschaftliche Verhältniss zwischen Nanomitrium und Ephemerum

klargelegt und sich des Näheren über die Stellung dieser Gattung

mit der höchst einfach gebauten Kapsel ausgesprochen.

Die Beschreibung Limpricht’s von Nanomitrium in Raben-

horst's Kryptogamenflora II. Aufl. IV. Bd. I. Abth. bedarf der Be-

richtigung. Da ihm nur wenig von Breutel bei Niesky gesammeltes

Herbarmaterial, das ungefähr 50. Jahre gelegen hat, bei der Unter-

suchung zur Verfügung stand, so ist es erklärlich, dass er sowohl

!) Flora oder allgemeine Botanische Zeitung 1895 Heft 3 pag. 459—486.

?) Siehe Abhandlungen des naturw. Vereins zu Bremen XII. Bd. pag. 106.

3) Sur le genre Nanomitrium (Lindberg). Revue bryologique 1893 p. 49

(nicht 1895, wie Göbel irrthümlich citirt).

12*

180 Fr. Müller.

wie Göbel, der gleiches Material untersuchte, Einiges nicht hat

beobachten können, was man bei lebenden, fruchtreifen Exemplaren

leicht erkennen kann,

Es sei vorweg bemerkt, dass die hiesigen Pflanzen sich durch

lange Blätter auszeichnen; sie gehören also der var. longifolium —

Ephemerum Philiberti Bescherelle an,

Wenn Limpricht von Nan. ten. angiebt, „in Grösse und

Tracht wie Ephemerum serratum‘, so ist das im Allgemeinen richtig;

allein die Pflänzchen sind doch schon bei makroskopischer Betrachtung

! LE} h

Kain,

n208 (J

(7)

von Eph. serr. leicht dadurch zu unterscheiden, dass das Grün ihrer

Blätter matter, gelblicher, dass ihr allerdings auch bis zur Frucht-

reife bleibender Vorkeim oft so winzig ist, dass er erst bei der

mikroskopischen Untersuchung hervortritt, und endlich, dass die

reifen, kugeligen Früchte zwischen den auseinander getretenen

Blättern dunkelbraun, entdeckelt gelbbraun erscheinen, während die-

jenigen von Eph. serr. schön rothbraun aussehen.

Be:

Beobachtungen an Nanomitrium tenerum Lindb, 181

Die von Göbel |. c. pag. 464 ausgesprochene Vermuthung,

dass die Blätter von Nanomitrium bei trockenem Wetter über der

reifen Kapsel zusammenneigen, bei feuchtem sich ausbreiten, habe

ich nicht bestätigt gefunden. An Räschen, die ich von Mitte October

bis Ende November im Freien kultivirte, beobachtete ich, dass die

Pflänzchen in ihrer Jugend besonders die jüngsten, grössten, obersten

Blätter eng zusammengeschlossen halten und so anfangs die

Geschlechtsorgane und später auch die junge Kapsel schützen

(Fig. 1). Mit der Vergrösserung der letzteren aber treten auch die

obersten Blätter immer mehr auseinander und biegen sich schliess-

lich so weit zurück, dass die Kapsel ganz frei liegt (Fig. 2 u. 3).

Durch Veränderungen des Feuchtigkeitsgehaltes der Luft scheinen

sie dann nicht mehr beeinflusst zu werden: ich habe nicht wahr-

genommen, dass sie ihre Lage verändert hatten, wenn ich sie des

Morgens nach nebliger Nacht oder gleich nach Mittag bei klarem

Sonnenschein besah. Obgleich die Kapselwand nur eine einzige

Zellschicht enthält, so werden durch deren ziemlich starken Zell-

wände die Sporen doch hinreichend geschützt; die obersten Zellen

der Kapselwand geniessen ausserdem in der Jugend stets und oft

noch zur Fruchtreife einen Schutz durch die Haube.

So lange die Kapsel noch von den Blättern eingeschlossen wird,

ist sie grün gefärbt, da die Zellen ihrer einschichtigen Wandung

mit zahlreichen Chlorophy1ikörnchen angefüllt und die jungen Sporen

noch farblos sind. Im Alter dagegen werden die Zellen der Wand

durch das Schwinden des Chlorophylis durchsichtiger, die Sporen

erhalten bei ihrer Reife eine braune Farbe und daher erscheint dann

die Kapsel braun. Schon gleich nach der Befruchtung bräunen sich

die Wände der wenigen unteren Zellen des Archegonhalses, während

die obersten farblos bleiben und später noch an der Spitze der

Haube als geschrumpfte Masse sichtbar sind (Fig. 4). Auch die

Wandungen der Zellen an der Einschnürung zwischen dem Fuss

und der Kapsel (rudimentäre Seta) erleiden schon früh eine Bräunung,

die sich nicht wieder verliert. Das Scheidchen dagegen, welches

den kugligen, aus wenigen grossen Zellen bestehenden Fuss des

Sporogons mit einer einzigen Zellschicht einschliesst, bleibt wasserhell.

Die sehr zarte, kleine Haube hält sich meist nicht lange auf der

frei liegenden Kapsel. Oeffnet man aber vorsichtig ein Pflänzchen,

dessen obere Blätter zwar noch nicht auseinander gedrängt, das aber

durch die bauchige Erweiterung in seiner Mitte erkennen lässt, dass

die in ihm enthaltene junge Kapsel Kugelgestalt annimmt, so kann

man schon unter der Lupe ein braunes Spitzchen am Gipfel der

Kapsel als Haube wahrnehmen (Fig. 4). Einzeln habe ich auch selbst

an der reifen Kapsel die Haube auf deren Deckel noch gesehen;

R. Ruthe fand an einigen Exemplaren, die ich ihm zugesandt, dass

a Aura ee Ta SE

Bi Au a0 ae

ni u Zu nut ii a

a a er > SE En n rm ee rind did m 5 At Zn U

182 Fr. Müller,

die Haube der kugeligen Kapsel seitlich ansass. Infolge der Kugel-

gestalt, die die Kapsel später bekommt — anfangs ist das Sporogon

fast cylindrisch —, vermag die Haube nur wenige der Gipfelzellen

der Kapsel zu bedecken. Sie besteht übrigens nicht blos aus dem

Archegonhalse, sondern enthält auch Theile des Archegonbauches

(Fig. 5).

Die obersten Blätter von Nan. ten. schliessen 2-4 Archegonien

ein, von denen sich in der Regel nur eins nach der Befruchtung zur

Kapsel entwickelt. Doch ist es mir wiederholt vorgekommen, dass

zwei Archegonien befruchtet und zu gleichartig ausgebildeten Kapseln

herangewachsen waren. Viele Mühe habe ich auf die Untersuchung

des Oeffnens der Kapsel verwandt und kann in diesem Punkte, da

mir lebendes fruchtreifes Material zu Gebote stand, die Beobachtungen

der früheren Forscher ergänzen. Uebt man mit dem Deckgläschen

auf eine scheinbar reife aber ungeöffnete Kapsel, die man aus den

Blättern herausgenommen hat, vorsichtig einen Druck aus, so wird

sie, da ihre Wand ziemlich hinfällig geworden ist, meist unregel-

mässig zerreissen und die Sporen hervortreten lassen; häufig aber

trennt sich dabei ein Deckel von dem unteren Theil der Kapsel ab,

wie es Fig. 7 zeigt. Als ich am 2. Nov. nach einer Nacht, in welcher

das Thermometer 3° unter Null zeigte, während bis dahin die Nächte

frostfrei gewesen waren, Pflänzchen, die in eine zarte Fiskruste ein-

geschlossen waren, nach dem Aufthauen untersuchte, fand ich, dass

eine Anzahl von ihnen die Kapsel geöffnet hatten, Dabei war der

obere Theil der Kapselwand — ausser der grossen, besonders vor-

springenden Gipfelzelle noch zwei Zellreihen — als Deckel ab-

gehoben, derart, dass er nicht abgeworfen, sondern, da er an einer

Stelle an dem unteren Kapseltheile haften blieb, zur Seite des oberen

Theiles der Sporenmasse gedrängt worden war (Fig. 2 u. 3). Wären

die Pflänzchen mit den auf diese Weise geöffneten Kapseln im Freien

geblieben, so würden durch irgend welche äusseren Einflüsse die

Deckel gewiss bald ganz abgelöst worden sein.

Betrachtet man die ungeöffnete Kapsel von oben, so erkennt

man, dass sich an die eine oder zwei Zellen des Gipfels drei oder

vier Zellen anschliessen, die ihrerseits wiederum von 6—10 Zellen

begrenzt werden (Fig. 7). Alle diese Zellen bilden den Deckel; sie

sind auffallend gross und dickwandig und enthalten mehr Chlorophyll

als die Zellen des unteren Kapseltheiles. Zwischen jener dritten

Zellreihe und der nächsten befindet sich noch oberhalb der Mitte

der Kapsel eine Schicht, die schon Göbel als „Ring“ bezeichnet

hat. Nach seiner Fig. 3 pag. 464 liegt dieser Ring allerdings etwa

in der Mitte der Kapsel; auch Philibert giebt pag. 51 an: „elle

(la capsule) semble plutöt se dechirer sur place, quelques fois

irrdgulicrement, mais souvent aussi suivant une ligne circulaire qui

ENT 4E

Beobachtungen an Nanomitrium tenerum Lindb, 183

la partage en deux hemispheres egaux, le superieur se separant

en forme de calotte reguliere.“ Bei den von mir untersuchten

Exemplaren war der Deckel jedoch stets weit kleiner als der untere

Kapseltheil, der „Ring“ lag also auch oberhalb der Mitte (Fig. 6).

Diejenige Schicht, welche an der Kapsel als „Ring“ auffällt, ist

bedeutend schmäler als die übrigen benachbarten Zellreihen; sie

enthält kein Chlorophyll, ist ungefärbt und bewirkt, dass sich der

Deckel von der Kapsel ablösen kann. Dabei zerreisst dieser „Ring“

derart, dass er entweder theilweise am Deckel, theilweise an der

Kapselmündung hängen bleibt, oder aber er spaltet sich in aequatorialer

Richtung unregelmässig, so dass Stücke von ihm aus derselben Region

sowohl am Deckel, als auch am unteren Urnentheil zu finden sind,

wie man es an vorsichtig zerdrückten und auch auf natürlichem Wege

geöffneten Kapseln beobachten kann (Fig. 7). Da dieser „Ring“ nicht

ringsum zu gleicher Zeit sich ablöst, oder zerreisst, so muss der

Deckel, wenn er abgehoben wird, an einer Stelle haften bleiben. —

Weder an jungen noch an alten Kapseln, deren Sporen vorsichtig

entfernt waren, um die Wandung besser beobachten zu können, habe

ich in dieser Ringzone vertical gerichtete Scheidewände gefunden,

wie sie der „Ring“ in Göbel’s Fig. 3 zeigt. Es scheint mir daher

dieser „Ring“ nur die ganz besonders stark ausgebildete Zellwand

zwischen der 3. und 4. Zelllage, vom Gipfel der Kapsel aus gerechnet,

zu sein; dies deutet auch Philibert an, wenn er |. c. pag. 50

schreibt: et dont les parois dessinent comme une sorte d’anneau

simple non divise.*) Wir haben es bei diesem so einfach gebauten

Moose offenbar mit der niedrigst entwickelten Ringbildung zu thun.

Was die Verbreitung der Sporen von Nan. ten. anbelangt —

jede Kapsel enthält deren 4—500, sie sind von Philibert genau

beschrieben —, so spricht Göbel die Vermuthung aus, dass die

sich ablösenden Kapseln hinweggeschwemmt werden. Diese Art der

Verbreitung mag stattfinden, aber es wird sicher nicht die einzige

sein; die Kapseln sitzen auch ziemlich fest mit ihrem Fuss in dem

Pflänzchen. Für Jemanden, der die Pflanzen an ihren natürlichen

Standorten beobachtet hat, liegt es nahe, anzunehmen, dass kleine

und vielleicht auch grössere Thiere (z. B. Fischotter) an der Ver-

breitung der Sporen theilnehmen. Zu der Zeit, wenn die Sporen

reif und der Deckel abgehoben ist, liegt die Kapsel ganz frei; die

schlaffen Blätter sind nach der feuchten Erde gebogen und ver-

mögen sich nicht wieder zu erheben, um die dicke Kugel einzu-

4) Nachträglich theilt mir jener Herr brieflich noch mit, dass nach seiner

Ansicht die Entdeckelung von Nan. ten. zwar durch eine eigenartige Verdickung

rings um die Kapsel bewirkt wird, dass ihm aber das Vorhandensein eines

wirklichen Ringes an diesen Kapseln höchst zweifelhaft sei.

184 Fr. Müller,

schliessen. Untersucht man frische Räschen, so findet man gar

nicht selten kleine Thiere, besonders Milben, zwischen und über

den Pflänzchen hinkriechen, die mit ihren Beinchen gelegentlich auch

die Sporen der geöffneten Kapseln berühren und forttragen können;

auch Wasservögel werden bei der Verbreitung der Sporen betheiligt

sein. Andererseits unterliegt es wohl keinem Zweifel, dass durch

einzelne auf die geöffnete Kapsel fallende Regentropfen die Sporen

fortgeschleudert werden und dass bei Ueberschwemmungen des Stand-

ortes dieser Pflänzchen durch das ab- und zufliessende Wasser die

Sporen fortgetragen werden können. Gelangen die fortgetragenen

Sporen aber nicht wieder auf Schlamm, der fast das ganze Jahr

über nicht austrocknet, so werden sie auch nicht zu fruchttragenden

Pflanzen sich ausbilden können. Auf diese nicht überall herrschenden

Vorbedingungen des Standortes, sowie darauf, dass noch nicht überall

an passenden Orten mit Eifer gesucht worden ist — da die schlammigen

Ufer der Teiche sehr bald eine Vegetation von anderen Moosen, sowie

Gramineen und Cyperaceen aufkommen lassen, so wird man Nano-

mitrium tenerum häufig nicht anders auffinden können, als dass man

kriechend die Ufer absucht —, wird es zurückzuführen sein, dass

dieses kleine Moos erst von so wenigen Standorten in Deutschland

bekannt geworden ist.

Eine Beobachtung, die ich an entdeckelten, bis zum Rand mit

Sporen gefüllten Früchten von Physcomitrium eurystomum Sendt., das

ebenfalls das schlammige Ufer des Mühlenteiches bei Varel bewohnt,

machte, lässt mich vermuthen, dass auch bei der Verbreitung der

Sporen dieses Mooses Thiere von Einfluss sein werden. Bekanntlich

ist Physcomitrium peristomlos und die Kapsel von Ph. euryst. nach

dem Oeffnen und Abwerfen des Deckels auffallend weitmündig, die

Seta nur kurz. Es können auch bei dieser Pflanze die Sporen leicht

durch grössere Thiere, welche auf die mit reifen Früchten versehenen

Räschen treten, verschleppt werden. An frischen Pflanzen, die ich

aus dem Freien in's Zimmer brachte und kurze Zeit dem direkten

Sonnenlichte aussetzte, bemerkte ich, dass, wenn ich die Seta oder

selbst auch nur die rosettenartig der Erde fast aufliegenden Blätter

der mit entdeckelten, weit geöffneten Kapseln versehenen Pflänzchen

sanft mit der Nadel berührte, einzelne Sporen in weitem Bogen aus

der Kapsel herausgeschleudert wurden. Die kurze Seta ist offenbar

sehr elastisch, und es genügt schon eine kleine Erschütterung, wie

sie etwa durch einen geringen Druck auf die Blätter bewirkt wird,

um die Kapsel derart aus ihrer Lage und zum Zurückschnellen zu

bringen, dass einzelne oben aufliegende reife Sporen herausgeschleudert

werden. Solch’ ein Druck, wie ich ihn absichtlich hervorbrachte, wird

aber gewiss auch durch Käfer und andere Gliederthiere, welche zwischen

den Pflanzen von Physcomitrium herumkriechen, auf diese ausgeübt.

Bi % 5 fi Sr R EN ß

Beobachtungen an Nanomitrium tenerum Lindb. 185

Dass dabei die Sporenausstreuung allmählich vor sich gehen muss, liegt

auf der Hand, und dass übrigens auch der Wind sowie herabfallende

Regentropfen die Sporen dieses Mooses aus der Kapsel bringen und

fortführen können, ist wohl nicht zweifelhaft.

Varel, Anfang Januar 1896.

Figurenerklärung.

Nanomitrium tenerum Lindb.

Die Figuren 4 und 5 sind bei 136facher, Figuren 6 und 7 bei 480facher

Vergrösserung gezeichnet.

Figur

Junge Pflanze; p Protenema.

Fruchtreife Pflanze mit geöffneter Kapsel und seitlich liegendem

Deckel o.

Dieselbe von oben gesehen.

Frei präparirte unreife Kapsel mit Haube c und Fuss p im optischen

Längsschnitt geschen.

Haube.

Fast reife Kapsel; Oberflächenansicht. a die Ringzone (in der Figur

verhältnissmässig zu breit gezeichnet), s Scheitelzelle, p Fuss. (Durch

ein Versehen des Zeichners ist in dieser Figur der Ring etwas zu breit

gezeichnet, die oberen Zellwände müssten noch etwas heruntergerückt

werden. Ferner ist bei dem Deckel die Zellwandung zwischen den

beiden Zellen der zweiten Lage von rechts nicht doppelt contourirt

gezeichnet worden. Die Redaction.)

Oberer Theil einer solchen Kapsel, die vorsichtig zerdrückt. D Deckel,

U unterer Kapseltheil, s Scheitelzelle, a Ringzone, r Reste des Ringes.

a nahe: ir ins. 50h. > En la EEE

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Beiträge zur Flechtenflora Nord-

amerikas.

Von Dr. J. Hulting.

Die Kenntniss der Flechtenvegetation Nordamerikas ist in

mancher Beziehung noch sehr unvollständig. Vorzugsweise gilt

dieses von der geographischen Verbreitung der Flechten. Eine

Aenderung in dieser Hinsicht ist wünschenswerth und wäre besonders

dadurch zu bewirken, dass die Lichenologen der verschiedenen

Orte kleinere Gebiete genau untersuchten. Durch eine solche

Theilung der Arbeit würde eine gründliche Eıforschung des Landes

ermöglicht. Jeder Beitrag, der zum Erreichen dieses Zieles dient,

ist deshalb von grossem Interesse,

Im Jahre 1890 sandte mir Herr Rev. C. A. Waghorne in St.

Johns zur Bestimmung verschiedene Flechtenarten, welche er in

Newfoundland eingesammelt hatte. Auch seitdem hat er mir mehr-

mals Flechten freundlichst geschickt, von ihm theils in Newfound-

land theils in Labrador gesammelt.

Zum Verständniss für das Folgende füge ich vorerst einen

kurzen Abriss über diese beiden Länder bei.

Labrador ist die grösste Halbinsel Amerikas. Das Areal des

Landes umfasst über 1,000,000 []km und das Innere ist nach dem,

was bis jetzt bekannt ist, zu urtheilen, ein Felsplateau mit schnee-

bedeckten Bergen und sehr ausgedehnten moorigen Torfstrecken —

Alles in ewigem Einerlei. Erratische Blöcke trifft man häufig. Ob-

gleich diese Halbinsel unter gleicher Breite mit Norddeutschland

und dem südlichen Schweden liegt, ist dieselbe doch eines der

kärglichsten, kältesten und wüstesten Länder der Erde. An der

Küste wenigstens kommen Gneis und Granit vor. Labrador ist durch

Belle Isle Strait von Newfoundland geschieden, und bei dieser

Strasse wurden die meisten mir aus Labrador gesandten Flechten

gesammelt.

Newfoundland, an der Nordostküste Amerikas gelegen, hat ein

Areal von mehr denn 100,000 | |km. Die Küsten sind sehr unregel-

mässig gestaltet durch tief eindringende Meerbusen, besonders an

der Ost- und Südseite. Das Innere ist grösstentheils ein Felsen-

plateau mit Seen, Waldungen und Morästen. Das Klima ist, wie

y ie Bi 1 BE EG m ara EEE 1 en & 1 ana m En ne u © ie a Da on, Sign Ba Un BE Da ande ann he en

Beiträge zur Flechtenflora Nordamerikas. 187

bekannt, weit kühler als in den Ländern Westeuropas unter gleicher

Breite. — Die meisten Flechten, welche ich von Newfoundland er-

halten habe, sind bei Notre Dame Bay und Trinity Bay eingesammelt

worden.

Vor einigen Jahren sandte mir auch Herr Dr. Josua Lindahl

in Springfield (Illinois) und Herr Apotheker F. B. Hulting in San

Francisco mehrere Flechtenarten zur Bearbeitung, die vorzugsweise

in Californien gesammelt waren.

Es ist mir eine angenehme Pflicht, dem Herrn Prof. W.Nylander

in Paris für die Hülfe, die er mir mit grösster Bereitwilligkeit ge-

leistet hat, an dieser Stelle meinen verbindlichsten Dank auszusprechen.

Es folgt nun ein Verzeichniss der erwähnten Flechtenarten.

Alectoria ochroleuca (Ehrh.) Nyl. — E. Stizenberger: Die

Alectorienarten und ihre geographische Verbreitung pag. 122.

Newfoundland: Exploits. Labrador: Blanc Sablon (f. rigida ster.)

A. sarmentosa (Ach.) Nyl. — E. Stizenberger |. c. pag. 123.

In Labrador und Newfoundland nicht selten steril; in der Gegend

von Kanes Point (Newfoundland) c. fr.

A. nigricans (Ach.) Nyl. — E. Stizenberger 1. c. pag. 121.

Labrador: Bei L’ause au Clair und Blanc Sablon mit Früchten.

A. divergens (Ach.) Nyl. — E. Stizenberger |. c. pag. 126.

Labrador: Blanc Sablon.

Arthonia patellulata Nyl. (in Bot. Not. pag. 95).

Newfoundland: An der Rinde der Espen bei Notre Dame Bay

(z. B. um Sparrible Cove).

Caloplaca coralloides Tuckerm. (Synopsis I. pag. 169.

Boston 1882).

California: Farallones Islands 1886. Legit Dr. J. Lindahl.

Cetraria hiascens (Fr.) Th. Fr. (Lich. Scand. pag. 98).

Labrador: Blanc Sablon und L’ause au Mort; fertil.

C. nivalis (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 294).

Labrador: Forteau. Nur sterile Exemplare.

C. cucullata (Bell.) Ach. (Prodr. pag. 171).

Labrador: West S. Modiste.

C. Fahlunensis (L.) Schaer.

Labrador: Forteau und Red Bay.

C. ciliaris Ach. — Nyl. Syn. pag. 308.

Newfoundland: An Wachholder- und Lärchenbaum bei Notre

Dame Bay mit Früchten.

Cladonia cenotea (Ach.) Schaer,

Newfoundland: Indian Point,

188 J. Hulting.

C. (Pyenothelia) papillaria (Ehrh.) Hoffm.

Newfoundland: Bay Bulls Arm.

C. bellidiflora Ach. (Prodr. pag. 194).

Labrador: L’ause au Mort mit Früchten.

Evernia vulpina (L.) Ach. (Meth. pag. 267).

Vereinigte Staaten von Nordamerika: Roses Cahon 1886. Dedit

J. Lindahl. — In Yosemite Valley im Jahre 1875 von Herrn F. B. Hulting

gesammelt; da auch fructificirend,

Gyrophora proboscidea (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 105).

Diese Pflanze kommt in Labrador und Newfoundland hier und

da vor.

G. cylindrica (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 107).

Labrador: Battle Harbour, Bolster Rocks, Red Bay und Long Island.

G. erosa (Web.) Ach. (Meth. 1803 pag. 103).

Labrador: L’ause au Clair,

G. hyperborea (Hofim.) Ach. (Meth. 1803 pag. 109).

Hier und da in Newfoundland und Labrador vorkommend.

G. arctica Ach. (Meth. 1803 pag 106).

Labrador: East und West Modiste, Red Bay.

G. vellea (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 109).

Newfoundland: Bei Notre Dame Bay steril.

G. Mühlenbergii Ach. (Syn. pag. 227).

Labrador: L’ause au Clair.

G. spodochroa (Ehrh.) Ach. (Meth. 1803 pag. 108).

Newfoundland: Bei Exploits (parce fructifera).

Icmadophila aeruginosa (Scop.). — Ach. (Meth. pag. 58).

Labrador: Fox Cove und L’ause au Clair.

Lecanora (Psoroma) hypnorum (Hoffm.) Ach. (Meth. pag. 185).

Newfoundland: Chance Cove. Labrador: L’ause au Mort.

L. saxicola (Poll.) Ach. (Lich. Univ. 1810 pag. 431).

Newfoundland: Chance Cove.

L. constipans Nyl. (Lich. N. Zeland. 1888. p. 58).

California: Farallones Islands (in der Gegend von San Francisco)

1886. Legit J. Lindahl.

L. pallescens (L.) Schaer. (Enum. 1850 pag. 78).

Labrador: Blanc Sablom.

L. subfusca (L.) f. glabrata Ach. (Lich. Univ. 1810 pag. 395).

Pinicola.

Newfoundland: Little Ridge und New Harbour.

L. subfusca f. campestris (Schaer.).

Newfoundland: Bei Notre Dame Bay.

Beiträge zur Flechtenflora Nordamerikas. 189

L. epibrya Ach. (Prodr. 1798 pag. 79), Nyl. in Flora 1872

pag. 250. Crombie British Lichens pars I pag. 411. Sporae 0,014 —23 u

longae et 0,008— 11 u crassae.

Labrador: L’ause au Mort über absterbenden Moosen und

Pflanzenresten.

L. chlarona Ach. (Univ. pag. 397) Nyl. (in Flora 1883, pag. 107).

Crombie in British Lichens pars I pag. 413.

Newfoundland: Little Ridge, New Harbour und Bay Bulls Arm,

an der Rinde der Nadelhölzer.

L. symmictera Nyl. (in Flora 1872 pag. 249). Crombie in

British Lichens pars I pag. 435.

Newfoundland: Topsail. Pinicola.

L. badia (Pers.) Ach. (Univ. pag. 407).

Labrador: Battle Harbour und Red Bay.

L. polytropa (Ehrh.) Th. Fr. (Lich. Arct. pag. 110).

Newfoundland: Notre Dame Bay.

L. phryganites Tuckerm. (Synopsis pag. 182).

California: Farallones Islands. Legit J. Lindahl anno 1886.

L. tartarea (L.) Ach. (Lich. Univ. 1810 pag. 371) forma

microcarpa bei Fox Cove in Labrador; f. thelephoroides Th. Fr.

(in Lich. Spitsb. pag. 21), steril bei Battle Harbour (Labrador); f. frigida

(Sw.) bei Battle Harbour in Labrador.

L. ventosa (L.) Ach. (Lich. Univ. 1810 pag. 399).

Labrador: Packs’ Harbour.

L. cismonica (Beltr.). — Körb. Par. pag. 93.

Newfoundland: Whitbourne.

Lecidea (Biatora) cinnabarina Smrft. (Vet. Ak. Handl. 1823

pag. 115). Th. Fries in Lich. Scand. pag. 422.

Labrador: Bei Fox Cove an Baumrinden.

L. (Biatora) vernalis (L.) Ach. (Prodr. pag. 51), Nyl. (Scand.

pag. 200).

Newfoundland: Bei Trinity Bay und Notre Dame Bay.

L. (Biatora) helvola (Körb.) Hedl. (Kritische Bemerkungen über

Lecanora etc. pag. 61).

Newfoundland: Bei Notre Dame Bay. Pinicola.

L. (Biatora) albofuscescens Nyl. (in Flora 1867 pag. 370).

Hue in Addend. Nov. ad Lich. Eur. pag. 140.

Newfoundland: Bei Trinity Bay. Corticola.

L. (Biatora) fuscescens Smrft. (in Vet. Ak. Handl. pag. 114).

Newfoundland: Whitbourne.

L. (Biatora) rivulosa Ach. (Meth. 1803 pag. 38). Huel. c. pag. 207,

nn 4 un ing

190 J. Hulting.

L. (Bilimbia)sphaeroides(Dicks.)Th. Fr. (inLich.Scand. pag. 369).

Newfoundland: Notre Dame Bay.

L. (Bilimbia) triplicans Nyl. (Lich. Scand. pag. 205).

Labrador: L’ause au Mort. Muscicola.

L. (Bilimbia) melaena Nyl. (in Bot. Not. 1853 pag. 182, Lich.

Scand. pag. 205).

Labrador: L’ause au Clair. Terricola et muscicola.

L. (Biatorina) tricolor (With.). Th. Fr. in Lich. Scand. pag. 574.

Newfoundland: Topsail. Pinicola.

L. sanguinaria (L.) Ach. «. endorhoda Th. Fr. (in Lich.

Scand. pag. 479),

Newfoundland hier und da.

L. pantherina (Ach.) Th. Fr. (in Lich. Scand. pag. 491).

Newfoundland: Notre Dame Bay, Sampsons Island und Black

- Island.

L. Dicksonii Ach. (Prodr. 1794 pag. 76).

Newfoundland: Sparrible Cove.

Leptogium tremelloides (L.). Crombie in British Lichens

pars | pag. 73. >

Newfoundland: Exploits und Whitbourne.

Nephroma laevigatum (Ach.) Körb, Syst. pag.55. Crombie l.c.

pag. 283.

Newfoundland: Bay Bulls Arm, Whitbourne und Old Shop.

Pannaria brunnea (Sw.) Ach. (Univ. pag. 409). Nyl. Lich.

Scand. p. 123. Crombie 1. c. 337,

Newfoundland: Notre Dame Bay. Labrador: Capstan Cove.

P. plumbea (Lightf.) Ach. (Univ. pag. 466). Crombie I. c. 346,

Newfoundland: Notre Dame Bay hier und da, z. B. um Leading

Tickles.

Parmelia physodes (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 250).

California: An dem Engpasse von Tahichipi in einer Höhe

von 1200 m. Dedit J. Lindahl. (Apothecia usque ad 17 u. lata.)

An demselben Standorte auch Parmelia conspersa (Ehrh.).

P. vittata Ach. (Meth. 1803 pag. 251). Nyl. in Flora 1875

pag. 106. Crombie |. c. p. 261.

Newfoundland: Bay Bulls Arm.

P. olivacea (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 213). Crombie I. c.

pag. 251.

Newfoundland: Bei Chapell (f. corticola Schaer.).

P. olivacea * sorediata Ach. (Univ. 1810 pag. 471).

Newfoundland: Exploits c. fr,

Beiträge zur Flechtentlora Nordamerikas. 191

P. hyperopta Ach. (Syn. pag. 208). Th. Fries in Lich. Scand.

pag. 120.

Newfoundland bei Rantem und in Labrador um Fox Cove und

Eagle River, mit Früchten, an der Rinde verschiedener Bäume.

P. stygia (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 203).

Labrador: Venison Tickle.

P. alpicola Th. Fr. (Lich. Arct. pag. 57, Lich. Scand. pag. 125).

Labrador: L’ause au Clair mit Früchten,

Peltigera rufescens (Neck.) Körb. Syst. pag. 59.

Newfoundland: Bay Bulls Arm.

P. venosa (L.) Ach. (Meth. 1803 pag. 282).

Labrador: Forteau.

Pertusaria bryontha (Ach.) Nyl. (Lich. Scand. pag. 178).

Labrador: L’ause au Mort.

P. Waghornei mihi.n. sp. Thallus crustaceus, albidus 1. albido-

cinereus, sublaevigatus, sat tenuis; apothecia adnata, lecanorina,

albopruinosa, plana |. concaviuscula, margine tenui interdum excluso;

asci monospori, subeylindrici, sporae magnae.

Variat magnopere apotheciorum magnitudine. Thallus K. cinna-

barinus. Discus apotheciorum saepe niger nudus. Apothecia

plerumque 1—2 « lata, margine albido thallino, saepe farinoso,

cincta. Sporae oblongae |. ellipsoideo-oblongae, 0,100—150 u longae

et 0,025 —40 u crassae, limbatae. Gel. hym. (praesertim asci) jodo

coerulescit, dein sordide obscuratur, sporis plus minus fulvescentibus.

Asci K vel NHO, non mutantur, — Paraphyses liberae, hyalinae.

Apothecia intus saepe rubricosa.

Terra Nova (Newfoundland): Ad corticem Betulae prope Whit-

bourne anno 1894. Legit Rev. C. A. Waghorne.

P. glomerata Ach. (Univ. 1810 pag. 310). Schaer. (in Spicil.

1823 pag. 66).

Labrador: Bolster Rocks.

P. communis DC. — Th. Fr. in Lich. Scand. pag. 317.

Newfoundland: Bei Notre Dame Bay an den Rinden der Laub-

hölzer. Parasitisch auf dem Thallus dieser Art kam Sphinctrina

turbinata (Pers.) bei Whitbourne vor.

Physcia parietina (L.) f. aureola Ach. (Univ. pag. 487).

Newfoundland: Exploits. Labrador: L’ause au Clair.

P. Iychnea Ach. (Meth. 1803 pag. 187) ?.

California: Farallones Islands im Jahre 1886. Legit J. Lindahl.

P. stellaris (L.)Nyl. (Lich. Scand. pag. 111).%.adscendens(Fr.).

Newfoundland: New Harbour, Chance Cove und Spread Eagle.

192 J. Hulting.

P. caesia (Hoffm.) Nyl. (Prodr. 1857 pag. 308).

Newfoundland: Exploits,

Pilophorus cereolus (Ach.). — Stereocaulon Fibula Tuckerm.

Syn. 1848 pag. 46.

Newfoundland: New Harbour.

Ramalina homalea Ach. (Lichenogr. univ. pag. 598).

California: Farallones Islands im Jahre 1886. Legit J. Lindahl.

R. fraxinea (L.) Fr. (L. E. 1831 pag. 30).

California: Roses Canon. Dedit J. Lindahl.

R. farinacea (L.) Ach. (Univ. 1810 pag. 606).

Newfoundland: Hier und da mit Früchten, z. B. New Harbour

und Dildo.

R. minuscula Nyl. (in Sällsk. pro F. et Fl. Fenn. 1866 pag. 114,

Lich. Lapp. or. pag. 114).

Newfoundland: Hier und da, auch fructificirend, z. B. bei New

Harbour, Exploits und Bay Bulls Arm.

Rhizocarpon polycarpum (Hepp) Th.Fr.(Lich.Scand. pag.617).

Labrador: An Felsen bei Forteau.

R. geminatum (Fw.) Th. Fr. (Lich. Scand. pag. 623).

Newfoundland: Notre Dame Bay.

R. eupetraeum (= Lecidea eupetraca Nyl. in Flora 1870 pag. 36).

Labrador: L’ause au Clair.

Solorina saccata (L.) Ach. (Univ. 1810 pag. 149).

Labrador: L’ause au Clair.

Sphaerophorus coralloides Pers. (Ust. Ann. I. 1794 pag. 23).

Ach. (Univ. pag. 585).

Newfoundland bei Whitbourne, nur steril.

Stereocaulon coralloides Fr. (in Sched. crit. IV. pag. 24).

Newfoundland: Chance Cove.

S. paschale (L.) Fr. (in L. E. pag. 202).

Labrador (Blanc Sablon}) und Newfoundland (Chance Cove),

S. tomentosum (Fr.) Th. Fr. (Lich. Arct. pag. 144).

Newfoundland: Exploits. '

S. pileatum Ach. (Univ. 1810 pag 582).

Newfoundland: Rantem.

Sticta aurata (Sm.) Ach. (Meth. 1803 pag. 278). Crombie I. c.

pag. 274. E. Stizenb. in Flora 1895 Heft I. pag. 118 No. 69.

Newfoundland: Bay Bulls Arm und Whitbourne (ster.).

Thelotrema lepadinum Ach. (Meth. 1803 pag. 132). — Körb,.

Syst. pag. 330.

Newfoundland: Bay Bulls Arm,

Er -

Beiträge zur Flechtenflora Nordamerikas. 193

Umbilicaria Pennsylvanica Hoffm. (Pl. Lich. III. 1801).

Newfoundland: Bay Bulls Arm und Whitbourne.

U. pustulata (L.) Hoffm. (D. Fl.).')

Labrador: L’ause au Clair und Forteau Bay. Apothecien kommen

bei beiden Arten reichlich vor.

Thallus tenuis, supra papulosus et nudus, intus saepe rubescens;

apothecia simplicia, marginata, sporae magnae.

Foveolae plerumque rotundatae, circiter 1-2 u latae; apothecia

crebra, 1-2 u lata, atra l. obscure rufescentia (praesertim humida);

sporae usque ad 0,080 u longae et 0,020—45 u crassae. Gel. hym.,

praesertim epithecium, K. pulchre roseo tingitur colore; jodo coerules-

cit, dein + sordide rubescit fulvescitve. — Haec varietas Umbilicariae

pustulatae nominatur Labradorensis, si placet.

Möglicherweise ist diese Var. durch ganz allmähliche Uebergänge

und Zwischenformen mit der Grundform eng verknüpft.

Im Jahre 1894 wurde dieselbe von Rev. C A. Waghorne bei

L’ause au Clair in Labrador eingesammelt.

Im Folgenden zähle ich einige Arten auf, die ich aus ver-

schiedenen Gegenden Newfoundlands und Labradors erhalten habe

und welche wahrscheinlich daselbst nicht selten sind: Alectoria

implexa (Hoffm.), prolixa (Ach.) und var. chalybeiformis (1..), Biatora

vernalis (L.) und uliginosa (Schrad.), Buellia parasema (Ach.) var.

disciformis, Cetraria islandica (L.), crispa (Ach.) und glauca (L.),

Cladonia gracilis (1..), furcata (Huds.), uncialis (L.) und turgida (Ehrh.),

Graphis scripta (L.), Lecanora tartarea (L.), varia (Ehrh.), subfusca

(L.) und cinerea (L.), Lecidea fusco-atra (L.), Parmelia saxatilis (1..),

omphalodes (L.), physodes (L.), centrifuga (L.) und ambigua (Ach.),

Peltigera canina (L.) und malacea (Ach.), Physcia obscura (Ehrh.)

und parietina (L.), Rhizocarpon geographicum (L.) und Xylographa

parallela (Ach.).

Norrköping, im December 1895.

!) E L’ause au Clair specimina nonnulla hujus speciei accepimus, quae

a forma typica haud paululum recedunt.

Hedwigia Ba, XXXV, 1890. 13

Ka te nn et ae tl, A, Se ee SZ Ze

Ueber Aecidium Galii Pers.

Von H. ©. Juel.

Auf Asperula tinctoria L. habe ich auf der Insel Gothland

ein Aecidium gefunden, welches bisher unbeachtet zu sein scheint.

Indess habe ich in den botanischen Sammlungen der Universität zu

Upsala ein altes Exemplar von diesem Aecidium gefunden, und es

hat sich herausgestellt, dass dies ein Original-Exemplar von Aecidium

Galii Pers. ist.

Das Exemplar, von dem hier eine photographische Abbildung

mitgetheilt wird, ist zwar sehr klein, trägt aber sehr zahlreiche

Aecidien und lässt eine ganz sichere Bestimmung zu. Es stammt

aus dem Herbar E. Fries. An dem Papierstücke, auf dem das

Exemplar aufgeklebt ist, steht eine nicht unterzeichnete Aufschrift.

Professor Th. M. Fries, dem ich diese Schrift vorlegte, versichert,

dass dieselbe von der Hand des bekannten schwedischen Lichenologen

E. Acharius herrührt. Diese Aufschrift lautet wie folgt:

„Aecidium Galii Pers,

a me specimina accepit sed ad sectionem primam retulit Persoon;

quare non video.

an distincta species ?*

Ueber die Meinung dieser Worte wird man in Persoon’s

Synopsis ') aufgeklärt. Hier wird die Gattung Aecidium in zwei

Sectionen getheilt, nämlich (pag. 205):

„* cespitosum: peridiis in cespitulum aggregatis, et macu-

lam crustaeformem efficientibus.

** simplex: peridiis sparsis, crusta quadam distincta non

coniunctis.“

Unter der ersteren Abtheilung steht:

„>. Aecidium Galii: lineare fuscum, peridiis puluereque

albidis.

Hab. in foliis Galii borealis. A cel. Achario beneuole mihi

missum. An specie a sequente distinctum? Macula crustacformis

rugosa et spadiceo-rubra est.“

Hieraus scheint mir hervorzugehen: 1. dass Persoon die Art

nur auf Exemplare, die er von Acharius erhalten, gegründet hat,

und 2. dass das erwähnte von Acharius gesammelte Exemplar

dieselbe Form ist, welche er an Persoon übersandt hatte, und

welche dieser mit seinem Ae. Galii gemeint hat.

') Persoon, Synopsis methodica fungorum, Pars. I, Gottingae 1801.

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R ir Piss

u ur 1 m. dä a uk a u U. Ba = al | rajupahand Bun.

u no u ir $ ei * ER ”

Ueber Aecidium Galii Pers, 195

Wir kommen jetzt zu der Angabe über die Nährpflanze. An

dem Originalexemplare wird dieselbe nicht angegeben. Da aber

Persoon Galium boreale als Nährpflanze angiebt, und da Acharius

in der nach dem Erscheinen der Persoon’schen Synopsis gemachten

Aufschrift dagegen nichts einzuwenden hat, so muss offenbar diese

Bestimmung von Acharius herrühren, und war vermuthlich auf

den an Persoon übersandten Exemplaren geschrieben. Diese Be-

Fig. 1.

Das von Acharius gesammelte

Orisinalexemplar von „Ae. Galii“

Pers.

Nat. Gr. Fig. 2.

Ae. asperulinum, vom Verf.

auf Gothland gesammelt.

4/, der nat. Gr.

stimmung ist jedoch unrichtig, die Nährpflanze des Exemplares ist

Asperula tinctoria. Galium boreale und Asperula tinctoria

sind wohl nicht zum Verwechseln ähnlich, aber da die von diesem

Aecidium befallenen Pflanzen ein etwas verändertes Aussehen der

Blätter bekommen und keine Blüten erzeugen, so kann ein solches

Verwechseln wohl möglich erscheinen.

Durch eine anatomische Untersuchung kann die Nährpflanze

sicher bestimmt werden. Der Stengel von Asperula tinctoria

zeigt einen sehr charakteristischen Querschnitt, der sich besonders

13*

ai FRR

196 H. ©. Juel.

durch ein sehr chlorophyllreiches und deutlich pallisadenförmig ent-

wickeltes Assimilationsgewebe auszeichnet. Galium boreale hat

dagegen ein weniger chlorophyllreiches Rindengewebe aus im Quer-

schnitt runden Zellen. Bei dieser Art ist auch die Epidermis und

die Endodermis weit kräftiger entwickelt als bei der Asperula.

Ein Querschnitt von dem Stengel des Originalexemplares zeigte, dass

hier von Galium boreale keine Rede sein kann, dass aber mit

Asperula tinctoria eine vollständige Uebereinstimmung vor-

handen ist.

Die Nährpflanze des Originalexemplares ist also Asperula

tinctoria, und das Aecidium ist dieselbe Form, die ich auf Gothland

gefunden habe.

Da Persoon nun diese Art in die Abtheilung * cespitosum

stellt, so kann man sich wohl darüber wundern, wie es auch

Acharius gethan hat. Die übrigen hierher gestellten Arten sind

nämlich sämmtlich fleckenbildend, d.h. ihre Mycelien nehmen kleinere

begrenzte Partien der Nährpflanze ein. Die zu der anderen Abtheilung

** simplex gestellten Arten haben dagegen (fast alle) ein nicht be-

grenztes, die ganzen Sprosse durchwucherndes Mycel; und diese Art

des Auftretens ist gerade für das Asperula-Aecidium charakteristisch.

Jene Einleitung ist zwar eine sehr gute und zeugt von dem syste-

matischen Scharfblick Persoon’s, aber er hat dabei offenbar seine

Aufmerksamkeit weniger auf die Ausbreitung oder die Begrenzung

des Mycels gerichtet, sondern mehr darauf, dass bei begrenzten

Mycelien ein besonderes von den benachbarten gesunden Partien

der Blätter abweichendes Gewebe, „crusta“, gebildet wird. Bei

gänzlich vom Mycel durchwucherten Blättern fällt eine solche

„erusta“ natürlich weniger in die Augen, und es scheint Persoon

entgangen zu sein, dass z. B. Ae. Anemones Gmel. (leuco-

spermum DC.), das er unter * simplex anführt, eine „crusta“

in seinem Sinne hervorbringt. Bei seinem Ae. Galii hat nun

Persoon die durch den Pilz hervorgerufene Veränderung der Blatt-

gewebe wahrgenommen, und da die Blätter nur eine kleine und

schmale Fläche haben, so hat er die auf jedem Blatte auftretenden

Aecidienbecher als einen „lineären“ Fleck bildend aufgefasst.

Acharius scheint diese Auffassung über die Verwandtschaft

der von ihm gefundenen Art nicht zu theilen, sondern hat richtig

erkannt, dass dieselbe mit den unter ** simplex aufgezählten Arten

zusammengehört. Seine Bemerkung: „an distincta species?“ ist etwas

zweideutig. Wahrscheinlich hat er geglaubt, dass Persoon andere

Aecidien-Formen auf Galium boreale gekannt, welche er irriger

Weise mit der Achari’schen vereint habe. Wäre aber dies der

Fall, so hätte Persoon wohl nicht ausschliesslich die Achari’schen

Exemplare für seine Art angeführt.

a: 2 Yope AZ Bu bu F e EEE Be si un in an in

Ueber Aecidium Galii Pers. 197

Hier ıst auch zu bemerken, dass ein Vorkommen von Aecidien

auf Galium boreale sehr fraglich ist. Eine Puccinia tritt zwar

auf dieser Art auf, aber dies ist eine Leptopuceinia, P. rubefaciens

Johans. (Botaniska Notiser 1886, pag. 174). In den Werken Winter's

und Saccardo's wird die Accidien bildende Puceinia Galii auch für

G. boreale angegeben. Dies kann entweder von Persoon’s An-

gabe herrühren oder durch ein Verwechseln mit P. rubefaciens ver-

ursacht sein.?) Fuckel,’) Plowright ') und Schroeter°) erwähnen

dagegen nicht G. boreale als Nährpflanze dieser Puccinia.

Der Name Aecidium Galii Pers. ist natürlich zu verwerfen,

da er auf einem Irrthum basirt. Statt P. Galii (Pers.) dürfte

P. Galiorum Link (Speec. plant. ed. 4 tom. 6, pap. 76; 1825) zu

setzen sein.®)

Das Aecidium auf Asperula tinctoria ist von der sowohl

auf anderen Asperula-Species, wie auf Galium-Arten auftretenden

P. Galiorum durch sein perennirendes Mycel hinlänglich ver-

schieden.’) Ich will jetzt diese Art eingehender beschreiben und

nenne sie vorläufig:

Aecidium asperulinum nov. nom.

Syn. Ae. Galii Persoon Synops. meth. fung. I., pag. 207.

Das Mycel ist perennirend und befällt ganze Sprosse, die dadurch

steril werden und ein verändertes Aussehen bekommen. Pykniden

werden reichlich erzeugt, die Aecidien stehen gedrängt und nehmen

öfters die ganze untere Fläche der Blätter ein, können auch oben

an den Blättern, sowie am Stengel auftreten. Pseudoperidie kräftig

und ziemlich lang. Sporen c. 18 « im Durchm.

Auf Asperula tinctoriaL. auf der Insel Gothland (Schweden).

Diese Art scheint bisher nur in Schweden beobachtet zu sein.

Acharius hat keine Angabe über den Fundort seiner Exemplare

2, Vergl. Lagerheim in Hedwigia 1889, pag. 106.

5) Symb. mycol., pag. 56.

') British Ured. and Ustilag., pag. 144.

5) Cohn’s Kryptog. Fl. von Schlesien, Bd. III, 1. Hälfte p. 314.

e) P. Galii Schweinitz (Synops. fung. Carol. 1822) ist wohl eher eine

Leptopuccinia, vielleicht P. Valantiae Pers.

*) Lagerheim (Ueber Uredineen mit variablem Pleomorphismus. Tromsö

Museums Aarshefte 1893, pag. 131) hebt das verschiedene Verhalten der Formen

dieser Art auf verschiedenen Nährpflanzen und in verschiedenen Klimaten her-

vor, und führt dies als einen Fall von variablem Pleomorphismus an. Ich wäre

mehr geneigt, anzunehmen, dass P. Galiorum einen Komplex von zwei oder

mehreren Arten bildet. Wie Lagerheim hervorhebt, fructificirt die Form

auf G. Aparine (= Ae. Galii 3. ambiguum Alb. et Schwein. Conspect.

fung. Nisk. 1805) vorwiegend in Aecidien. Bei der Form auf G. verum

(= Caeoma Galiatum Link I. c., pag. 2) ist dagegen die Aecidienentwicklung

spärlich und scheint bisweilen unterdrückt zu sein. Ich vermuthe daher, dass

diese beiden Formen specifisch verschieden sind.

Bi ne ne Fr an nn nn ae nn nt

198 H. O. Juel.

gegeben, da er aber in der Stadt Wadstena lebte, so hat er ver-

muthlich dieselben in der Gegend von Omberg (Prov. Oestergöthland),

g wo die Nährpflanze nicht selten ist, gesammelt

| Ich hatte diesen Pilz im Jahre 1883 bei Hessle im Kirchspiel

Fleringe auf Gothland gefunden und besuchte im Sommer 1895 am

18. Juni denselben Ort wieder. Es gelang mir auch, den Pilz wieder

zu finden. Der Fundort war ein trockener, steiniger und spärlich

bewachsener Boden, wo zahlreiche Exemplare von A. tinctoria

vom Pilze befallen waren. Im Allgemeinen waren alle von dem-

selben Rhizome entspringenden Sprosse und alle Zweige an den-

selben mehr oder weniger angegriffen. Die befallenen Sprosse fallen

leicht in die Augen, weil die kranken Blätter breiter und kürzer,

oft auch zurückgekrümmt werden, und weil die Blüthenbildung an den-

selben unterdrückt wird.

Zur erwähnten Zeit kamen an den befallenen Pflanzen keine

Uredo- oder Teleutosporen vor Auch auf alten, trockenen Blättern

und Stengeln, die ich an den kranken Pflanzenstöcken aufsammelte,

waren keine Teleutosporen zu finden. Eine ausgegrabene Aecidien

tragende Pflanze, die lebendig nach Upsala mitgebracht wurde, hat

auch später keine solche Sporen gezeigt. Es ist daher sehr wahr-

scheinlich, dass diese Pilz-Species auf der Asperula nur Aecidien

entwickelt.

Da die Art offenbar ein in den überwinternden Organen der

Nährpflanze perennirendes Mycel besitzt, so ist es möglich, dass sie

nur mit Aecidien fructificirt, und sie wäre dann mit Ae, Anemones

Gmel. (leucospermum DC.) zu vergleichen.‘) Aber es ist auch

möglich, dass dies Aecidium irgend einem heteröcischen Rostpilze

zugehört. Zwar sind die meisten heteröcischen Aecidien nicht

perennirend, aber durch Culturversuche, die J. Peyritsch) angestellt

hat, ist wenigstens eine heteröcische Puccinia mit ausdauernder

Aecidiengeneration bekannt, nämlich P. Arrhenatheri Klebahn,

Abh. d. Nat. Ver. Bremen, 1892 (= P. Magelhaenica J. Peyr.

apud Magnus, |. c.), deren Aecidien Hexenbesen auf Berberis

hervorruft, und deren Teleutosporen auf Arrhenatherum elatius

auftreten. In wie weit Ae. asperulinum sich ähnlich wie diese

Art verhalten kann, wird hoffentlich durch künftige Untersuchungen

dargelegt werden,

DE „7°. en

BEE Ar = a

°) Vergl. Soppitt, Journ. of Botany XXXI., pag. 273.

°») Vergl. Magnus, Die von J. Peyritsch in Tirol gesammelten Pilze. Ber.

d. naturw.-med. Vereins Innsbruck XXI.

ke ' 52 Se

Fungi aliquot saxonici novi

a cl. W. Krieger lecti.

(Contributio IV ad Floram Mycol. Saxoniae)

auctore J. Bresadola.

l. Leptosphaeria densa Bres. n. sp.

Maculis nullis; peritheciis dense gregariis, punctiformibus, globoso-

lenticularibus, 100—120 u, ex hyphis mycelialibus, luteis, 3 « latis

oriundis; ascis cylindraceo-subclavatis, 70—75 = 12—15 u; sporidiis

flavis, conglomeratis, 7-septatis, loculo tertio crassiore, ad septa media

subconstrictis, 34-36 = 4-5 u.

Hab. ad folia Acori Calami prope Königstein Saxoniae.

2. Phyllosticta straminella Bres. n. sp.

Epiphylla; maculis subeircularibus vel polygonalibus, isabellinis,

fusco-marginatis, peritheciis lenticularibus, vix prominulis, stramineis,

100—160 u. diam.; sporulis subcylindraceis vel ad latera compressis,

curvulis, 12—20 = 6—8 ut.

Hab. in foliis Rumicis Acetosae „Königstein“ Saxoniae.

3. Phyllosticta Chelidonii Bres. n. sp.

Epiphylla; maculis irregularibus, luteo-fuscis, saturatius lımitatıs;

peritheciis subcutaneis, globosis, 88—120 u diam.;, sporulis cylindraceis,

continuis, 7—8=3 «u, una alterave ad latera compressa, 1-septata,

10=3!; u.

Hab. in foliis Chelidonii majoris ‚Königstein‘ Saxoniae.

4. Ascochyta indusiata Bres. n. sp.

Epiphylla; maculis fuscis, subcircularibus vel ovoideis, atro-

zonatis, peritheciis fere suberficialibus, globoso-subovoideis, sparsis,

indusiatis, 130—210 «« diam.; sporulis subeylindraceis, 1-septatis, ad

septum subconstrictis, 18—24 —= 6, ıı hyalinis.

Hab. in foliis Clematidis erectae ‚Meissen‘ Saxoniae.

5. Staganospora Calami Bres. n. sp.

Peritheciis sparsis, globoso-ovoideis, ostiolo subprominulo, contextu

parenchymatico, 200 « diam.; sporulis hyalinis, cylindraceis vel sub-

clavatis, 24—30 = 8—9 u, 1- 3-septatis, 2—4 guttulatis.

Hab. in foliis Acori Calami prope Königstein Saxoniae.

200 J. Bresadola.

6. Staganospora bufonia Bres. n. sp.

Peritheciis nigris, gregariis, inordinate dispositis, ellipsoideis,

raro rotundatis, 160 —190 =- 150— 160 u; poro exiguo pertusis; sporulis

tereti-fusoideis, utrinque obtusis, rectis vel rarius subcurvulis, 3—5-sep-

tatis, crasse guttulatis, hyalinis, nucleis stramineo-pallidis, 24 —27 —

6—8 u,

Hab. in culmis et foliis Junci bufonii „Königstein“ Saxoniae.

Obs. A Staganospora innumerosa (Desm,) Sacc. peritheciis multo

majoribus, et a Staganospora insidiosa (Desm.) Sacc. peritheciis non

maculicolis diversa.

7. Camarosporium Kriegerii Bres. n. sp.

Peritheciis dense gregariis, atris, erumpentibus, globoso-depressis

interdum ellipticis, 280— 320 = 200—280 u; sporulis sarciniformibus,

rarius obovatis, 16—18 = 14 —17 u nonnulis 24 — 26 — 15—17 u, Idteo-

fuscis, 2—-5-septata-muriformibus vel cruciatim divisis, basidiis hyalinis,

8—10 —=2 u suffultis.

Hab. in caulibus Tanaceti vulgaris prope Königstein Saxoniae.,

8. Ramularia filaris Fr. var. Lappae n. var.

Maculis variis, fuscidulis; caespitulis amphigenis, albis; hyphis

valde ludibundis, denticulatis vel breviter ramulosis, subinde sursum

attenuatis; conidiis nunc 15 20 =2-—-3, nunc brevioribus 6-7 —3 u.

Hab. in foliis Lappae minoris prope Schweizermühle Saxoniae.,

9. Ramularia rubicunda Bres. n, sp.

Maculis parvis, gregariis, subeircularibus, rufis, saturatius limitatis;

caespitulishypophyllis, rufis; hyphis sub microscopio hyalinis, 70-75 —

4 «, conidiis primitus catenulatis, hyalinis, 1—3-septatis, 183—39—5 u,

Hab. in foliis Majanthemi bifolii „Polenzthal“‘ Saxoniae.

10. Ramularia deflectens Bres. n. sp.

Maculis nullis; caespitulis dense gregariis, hypophyllis, fere totum

folium occupantibus, majusculis albis; hyphis ramosis, hyalinis,

septatis, sursum dentatis, 100—120 = 4—6 u; conidiis cylindraceis

ad latera compressis vel clavato-subcurvatis, 1—4-septatis, 18—40 —

5-—7 u,

Hab. in foliis Violae tricoloris var: arvensis „Schandau‘“ Saxoniae.

Obs. A Ramularia agresti Sacc., notis datis, satis distincta,

ll. Ramularia Sagittariae Bres. n. sp.

Maculis dense gregariis, minimis, fuscis, obscurius limitatis;

acervulis albis, epiphyllis, in centro macularum generatim vegetantibus ;

hyphis brevibus, ramosis vel furcatis, septatis, 25-36 = 3—5 [TR

conidiis cylindraceis, hyalinis, 1-septatis, 16—24 — 3-4 u.

Hab. in foliis Sagittariae sagittifoliae „Königstein“ Saxoniae.

Fungi aliquot saxonici a cl. W. Krieger lecti. 201

12. Septocylindrium Aspidii Bres. n. sp.

Maculis nullis; caespitulis epiphyllis, candidis, effuso-pulveraceis;

conidiis cylindraceis, rectis velsubceurvulis, 15—24 = 3 u, pluriguttulatis,

dein 1—4-septatis, basidiis brevibus, 6-8 =3 u suffultis.

Hab. in frondibus vivis quas enecat Aspidii spinulosi „Polenz-

thal‘‘ Saxoniae.

Obs. Maculis propriis nullis, sed pars frondarum quam investit

exsiccatur.

13. Cercosporella macrospora Bres. n. sp.

Maculis subcircularibus, amphigenis, fuscis; caespitulis dense

gregariis, albis, generatim epiphyllis; hyphis hyalinis, basi stramineo-

tinctis, septatis, 40—45 — 5-6 u, conidiis bacillari-clavatis, pluri-

septatis, 160-230 = 4—5 u, hyalinis.

Hab. in foliis Sagittariae sagittifoliae prope Königstein Saxoniae.

ie rl a ee En a a un 5, az en ln Bi er nn an in

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I.

Einleitung.

Von G. Lindau.

Von jeher war es eine Hauptaufgabe der beschreibenden Botanik,

die Flora tropischer Länder zu erforschen und die dort vorhandenen

Pflanzen mit den einheimischen in Beziehung zu setzen. Haupt-

sächlich ist freilich die Sammelthätigkeit den Phanerogamen zu Gute

gekommen. Das ist auch ganz natürlich, denn der Reisende ist von

der Pracht und Grossartigkeit der tropischen Vegetation so gefangen,

dass er in erster Linie nur darauf ausgeht, die charakteristischen

Formen einzusammeln. Selten werden aber die Kryptogamen, von

den Pteridophyten natürlich abgesehen, in solchen Massen auftreten,

dass sie als tonangebend für bestimmte Formationen zu betrachten

sind. Mehr oder weniger bleiben sie im Verborgenen und nur ein

Sammler, der bereits mit einer Anzahl von Formen vertraut ist, wird

sich ihrem Einsammeln mit grösserem Erfolge hingeben können. Die

zierlichen Formen der Moose und Flechten haben noch cher die

Aufmerksamkeit auf sich gelenkt, daher besitzen wir bereits aus

tropischen Gebieten reichhaltige Collectionen dieser Klassen, anders

aber bei den Pilzen. Gerade die grösseren auffälligen Formen treten

in den Tropen etwas zurück, dafür herrschen unscheinbare oder

mikroskopische Arten vor. Um aber solche Pilze zu sehen und zu

sammeln, dazu gehört ein geübtes Auge; ausserdem ist es undenkbar,

dass ein Phanerogamensammler etwa nebenbei noch Pilze aufnehmen

kann. Nur derjenige Sammler wird für Pilze etwas leisten, der sich

ausschliesslich ihrem Studium hingiebt Freilich gehört ein besonderer

Geschmack dazu, an den schwarzen oder missfarbigen Krusten, an

den verfärbten Blattflecken und an den unförmlichen Baumpilzen

Gefallen zu finden, das mag wohl auch der Grund sein, weshalb so

wenige Specialsammler bisher die Tropen durchforschten.

Am genauesten sind wir noch mit den parasitischen Pilzen be-

kannt. Diese werden theils von dem Sammler schon an Ort und

Stelle bemerkt, zum grösseren Theil aber später von den getrockneten

Pflanzen noch abgenommen.

Südamerika bietet für das Gesagte ein gutes Beispiel. Während

wir mit seiner Phanerogamenflora einigermaassen vertraut sind, obwohl

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 203

natürlich auch hier noch gewaltige Lücken ausgefüllt werden müssen,

kennen wir von den Kryptogamen herzlich wenig. Am besten sind

noch von gewissen Gegenden, z. B. Brasilien, die Moose bekannt.

Für die Pilze, die an Zahl alle übrigen Kryptogamen zusammen weit

überragen, sind noch recht wenig Thatsachen an’s Licht gefördert.

Relativ gut sind meist diejenigen Gegenden bekannt, wo sich ein

Bildungscentrum befindet, so z. B. die Gegenden von Rio de Janeiro,

Blumenau, Buenos Ayres, Quito, Valparaiso etc. Von den südlicheren

Anden, von dem Amazonasgebiet, vom nördlichen Südamerika ist

bisher fast nichts bekannt. Wie reich die Pilzflora ist, zeigt jede

Sammlung, die zufällig zusammengebracht wird. Die Masse der neuen

und interessanten Formen ist sehr gross und regt immer wieder

dazu an, auf die Reisenden und Sammler einzuwirken, dass sie ihr

Augenmerk mehr auf die Pilzflora richten.

Die vorliegenden „Beiträge zur Pilzflora Südamerikas‘ basiren

fast ausschliesslich auf dem Material, das der leider so früh ver-

storbene J. Schroeter zur Bearbeitung erhalten hat. 14 grosse Kästen

enthalten in über 2000 Kapseln den kostbaren Schatz, dessen Be-

arbeitung Schroeter nur begonnen hat. Durchgearbeitet sind von

ihm nur die Myxomyceten und Phycomyceten, in allen übrigen

Klassen hat er zwar Ördnungsarbeiten vorgenommen und Notizen

gemacht, ist aber fast nirgends über die Bestimmung der Gattung

hinaus gekommen.

Bei einem Aufenthalt in Breslau, der dem Studium des

Schroeter’'schen Herbars diente, sah ich die Kästen mit den süd-

amerikanischen Pilzen genauer durch und erkannte sehr bald den

grossen Werth der Sammlung für die Pilzkunde. In liebenswürdigster

Weise stellte mir Herr Geheimrath P’rof. Dr. F. Cohn die Sammlung

für die Bearbeitung zur Verfügung und erlaubte mir, dieselbe nach

Berlin mitzunehmen, wo das reichlich vorhandene Vergleichsmaterial

ein eingehenderes Studium gestattete. Auch an dieser Stelle möchte

ich deshalb nicht verfehlen, Herrn Geheimrath Cohn meinen er-

gebensten Dank auszusprechen.

Das Schroeter'sche Herbar enthält hauptsächlich die Sammlung

von Ule, etwa 1500 Nummern. Diese ist ausserordentlich wichtig

für die brasilianische Pilzflora, weil Ule zu den wenigen Sammlern

gehört, die den „Pygmaeen“ der Pflanzenwelt eine eingehende und

liebevolle Aufmerksamkeit zuwenden. Eine sehr reichhaltige Samm-

lung argentinischer Pilze ist von Hieronymus zusammengebracht,

endlich ist die Sammlung von Balansa aus Paraguay, sowie eine

grosse Zahl von Originalen Spegazzini's vorhanden.

Es dürfte vielleicht einiges Interesse erregen, wenn ich noch mit

einigen Worten auf die Literatur eingehe, die über die tropisch-

südamerikanische Pilzflora existirt. Ich sche davon ab, auf Be-

204 P. Hennings.

schreibungen einzelner Arten Bezug zu nehmen, die von Mycologen

wie Berkeley, Cooke u. s. w. gelegentlich mit anderen Pilzen be-

schrieben worden sind. Hervorheben möchte ich nur diejenigen

Schriften, welche ganz oder doch fast ganz ausschliesslich sich mit

den Pilzen des genannten Gebietes beschäftigen.

Die ältere Literatur über diesen Gegenstand ist sehr zerstreut

und findet sich in den Schriften der älteren Mycologen. Darauf

braucht kaum eingegangen zu werden, da sich alle diese Arten in

Saccardo’s Sylloge, die als Nachschlagebuch jedem Mycologen unent-

behrlich ist, vorfinden.

Naturgemäss nahm auch die Kenntniss der Pilzflora von den

Küsten aus ihren Ursprung. Die ersten uns bekannt gewordenen Arten

sind bei Gelegenheit von Schiffsreisen eingesammelt worden und

wurden meist von Montagne, Berkeley, Leveill&€ u. A bearbeitet.

Die Kenntniss der Pilzflora nahm aber nur sehr langsam zu, so dass

noch 1876 Berkeley und Cooke die Zahl der aus Brasilien, dem pilz-

reichsten Lande, bekannten Arten nur auf 437 angeben konnten.

Das dürfte von allen zu erwartenden Pilzen kaum !;, sein. Jetzt

allerdings erhöht sich die Zahl der brasilianischen Pilze ungemein,

seit durch die Arbeiten Cooke’s, Winter's, Spegazzini’s und Hennings’s

so viele Sammlungen bestimmt und eine grosse Zahl neuer Arten

festgelegt wurde. Relativ am besten bekannt ist der südlichere

Theil Brasiliens, wo Puiggari und Alfred Möller grosse Sorgfalt auf

die Erforschung der Pilzflora verwandten,

Die Kenntniss der Pilze der übrigen tropischen Landstriche

ist noch in den ersten Anfängen. Argentinien ist durch Spegazzini

einigermaassen durchforscht, doch sind seine Arbeiten wenig kritisch

und nur mit Vorsicht zu benutzen, weil ihm das so unumgänglich

nöthige Vergleichsmaterial fehlte. Durch Lagerheim nnd Patouillard

sind wir mit den Pilzen Ecuadors bekannt geworden. Die Flora

der übrigen Länder behandeln einzelne Aufsätze, welche sich meist

nur mit eng umgrenztem Pilzgebiet befassen und nur in den aller-

wenigsten Fällen übersichtliche Zusammenstellungen bringen, die

einen Einblick in die Zusammensetzung der Pilzflora gewähren.

Ich gebe nun im Folgenden eine Aufzählung derjenigen Arbeiten,

welche ausschliesslich der Pilzflora des Gebietes gewidmet sind oder

wenigstens wichtige Beiträge dazu enthalten.

Berkeley, M. J. Description of a new Fungus of british Guiana.

London 1843.

Berkeley, M. J. Exotic Fungi from the Schweinitzian Herbarium,

principally from Surinam. 1854.

Berkeley, M.J. On some new Fungi. (Venezuela.) London 1857.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I, 205

Berkeley, M. J. Fungi brasilienses in prov. Rio de Janeiro a cl.

Dr. A. Glaziou lecti. (Vid. Medded. fra den naturh. Foren. i

Kjöbenhavn 187980. p. 31.)

Berkeley, M. J. Notices of some Brasilian Fungi. (Annals and

Magazine of Nat. Hist.)

Berkeley, M. J. and Cooke, M.C. Fungi of Brazil. (Journ. of Botan.

1876. p. 92. u. Journ. Lin. Soc. 1876. p. 363.)

Brefeld. Untersuchungen. Heft XII. 1895.

Cooke, M. C. Exotic Fungi. (Grevillea IX. 1880. p. 10 u. 97.)

Cooke, M. C. Fungi of Peruvian Andes. (Grevillea XIII. 1884. p. 4.)

Dietel, P. Die Gattung Ravenelia. (Hedwigia 1894.)

Farlow, W.G. Fungi in enumeration of the plants collected by

Dr. Rusby in South America 1885,86. (Bull. Torrey Bot. Club XV.

1888. p. 184.)

Fries, E. Eclogae Fungorum. (Linnaea V. p. 497.)

Graziani, A. Deux champignons parasites des feuilles de Coca.

(Bull. de la Soc. myc. de France VII. 1891. p. 152.)

Hennings, P. Fungi in Taubert Plantae Glaziovianae. (Engl. Jahrb.

XV. 1892 u. XVII. 1893.)

Hennings, P. Fungi goyazenses. (Hedwigia 1895. p. 88, 319.)

Hennings, P. Fungi blumenavienses. (Hedwigia 1895 p. 335.)

Karsten, P.A. Fungi aliquot novi in Brasilia a Dr. E. Wainio anno

1885 lecti. (Hedwigia 1889. p. 190.)

Karsten, P. A. Fungi novi brasilienses. (Rev. mycol. XI. 1889.

p. 206.)

Kunze in Weigelt Exsiccatae beschreibt Pilze aus Guyana.

Lagerheim, G. Ueber das Vorkommen europäischer Uredineen auf

der Hochebene von Quito. (Botan. Notis. 1891. p. 63.)

Lagerheim, G.v. Pucciniosira etc. 4 neue Uredineengattungen. (Ber.

d. Deutsch. bot. Ges. 1891. p. 1.)

Leveille, T. H. Fungi novo-granatenses. Paris 1863.

Möller, A. Die Pilzgärten einiger südamerikanischer Ameisen. Jena

1893.

Möller, A. Brasilianische Pilzblumen. Jena 1895.

Möller, A. Protobasidiomyceten. Jena 1895

Müller, J. Lysurus Clarazianus. (Flora 1873. p. 526.)

206 P. Hennings.

Patouillard, N. et Gaillard, A. Champignons du Venezuela et

principallement de la region du Haut-Orenoque. (Bull. Soc. mycol.

de France IV. 1888. p. 7, 92.)

Patouillard, N. et Lagerheim, G. v. Champignons de l’Equateur

I.—IV. (Bull. de la Soc. mycol. de France 1891—93). V. (Bull.

de I’Herb. Boiss. 1895.) VI. (Bull. de la Soc. mycol. de Fr. 1896.)

Pazschke, O. Erstes Verzeichniss der von E. Ule in den Jahren

1833—87 in Brasilien gesammelten Pilze. (Hedwigia 1892. p. 93.)

Pazschke, O. Zweites Verzeichniss etc. (Hedwigia 1896. p. 50.)

Rehm lieferte wichtige Beiträge in seinen Ascomycetes exsiccati,

deren Diagnosen sich in der Hedwigia finden.

Saccardo, P. A. et Berlese, A. N. Fungi brasilienses a cl. Balansa

lecti. (Rev. mycol. VII. 1885. p. 155.)

Schroeter, J. Vorläuf. Mittheil. über seine Bearbeitung der ihm zu-

gegangenen südamerikanischen Pilze. (Jahresb. d. schles. Ges. f.

vat. Cult. 1892. Bot. Sect. 1893. p. 13.)

Schroeter, J. Ueber südamerikanische Pilze. (Bot. Centralbl L.

1892. p. 39.)

Spegazzini, C. Fungi guaranitici. (Rev. mycol. VI. 1883. p. 57.)

Spegazzini. Fungi guaranitici Pug. I. (An. de la Soc. cientif, argent.

1884 u. 1885 cf. Rev. mycol. 1884. p. 57, 123, 193; 1885. p. 120.)

Spegazzini. Fungi guaranitici. (An. de la Soc. cientif. argentina

vol. XIX. XXI. 1885/86. cf. Rev. mycol. VIII. 1886. p. 62.)

Spegazzini. Fungi guaranitici Pug. I. (An. de la Soc. cientif.

argentina XXVI. 1888, p. 5.)

Spegazzini. Fungi guaranitici nonnulli novi vel critici. (Revista

Argent. de Hist. Natur. I, 1891. p. 101, 168, 398.)

Spegazzini. Fungi argentini Pug. I. u. I, (An. de la Soc. cientif.

„ argentina Av. 80. p. 158.)

Spegazzini. Fungi argentini Pug. III.—IV. (An. de la Soc, cientif.

argentina XII. u. XIII. 1881/82.)

Spegazzini. Fungi patagonici. (Bol. de la Ac. nac, de Cienc. de

Cordoba XI. 1887. p. 5.)

Spegazzini. Fungi nonnulli Paraguariae et Fuegiae. (Rev. mycol. XI.

1888. p. 93.)

Spegazzini. Fungi Piuggariani Pug. I. (Bol. de la Acad. Nat. de

Cienc. de Cordoba XI. p. 381.)

Spegazzini. Las trufas argentinas. (An. de la Soc. cientif.

argentina XXIV. 1887.)

Ei;

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 207

Spegazzini. Las faloideas Argentinas. (An. de la Soc. cientif.

argent. XXIV. 1887. p. 59.)

Spegazzini, C. Phycomyceteae Argentinae. (Revista Argent. de

Histor. Nat. I, 1891. p. 28.)

Thümen, F. v. De Fungis Entrerianis observationes in Lorentz,

La Vegetacion del Nordeste de la Prov de Entre Rios. Buenos

Ayres 1878. p. 9.

Thümen, F. v. Pilze aus Entre Rios. (Flora 1880 p. 30.)

Winter, G. Nonnulli fungi paraguayenses a Balansa lecti. (Rev.

mycol. VII. 1885. p. 206.)

Winter, G. Fungi novi brasilienses. (Grevillea XV. 1887. p. 86.)

Winter, G. Exotische Pilze IV. (Hedwigia 1887. p. 6.)

Myxomycetes, Phycomycetes, Ustilagineae und

Uredineae.

Von P. Hennings.

Myxomycetes.

Arcyria Hall.

A. punicea Pers. Disp. meth. Fung. p. 10.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau auf vermodertem Baumstamm.

Aug. und Sept. 1888. — E. Ule n. 807, 988.

A. cinerea (Bull.) Schum. Enum. Plant. Saell. n. 1480.

Brasilien, S.Cath. Blumenau auf faulenden Stämmen. Nov. 1888.

— E. Ule n. 1576.

A. tenuis Schröt. n. sp.

Peridiis sparsis, cylindraceis subcinereis, stipitatis, stipitibus nigri-

cantibus, tubulis capillitii inaequalibus sublevibus et minute spinulosis ;

sporis globosis 5—7 ı diametro, episporio levi, pallide flavo.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau an trockenen Palmfiedern.

Sept. 1888. -— E. Ule n. 1574.

Die Fruchtkörper stehen meist einzeln und zerstreut, sie sind

etwa 3—4 mm lang und kaum '/, mm dick, cylindrisch, graugelblich,

gestielt. Der Stiel ist halb so lang wie die Keule, schwärzlich. Das

Capillitium entspringt vom Rande des Bechers und ist ziemlich eng-

maschig, unten fast glatt, 3 « breit, oben feinstachelig, 2,5 « breit.

Die Sporenmasse ist hellockerfarben, gelblich.

208 P. Hennings.

Hemiarcyria Rostaf.

H. rubiformis (Pers.) Rost. Monogr. p. 262. f. 201, 230, 231.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau an abgestorbenen Blatt-

scheiden. Juli 1888. — E. Ule n. 843,

Die Fruchtkörper einzeln stehend, lang gestielt. Sporen 10—12 u,

feinpunktirt.

H. clavata (Pers.) Rost. Monogr. p. 267. |

Brasilien, St. Cathar. Joinville und Blumenau auf faulenden

Stämmen. Juni 1883, Juli 1888. — E. Ule n. 113, 783, 997.

Stemonites Gled.

St. fusca Roth in Magaz. f. Botan. p. 26. et Fl. Germ. I. p. 548.

Brasilien, St. Cathar. Itajahy und Rlumenau im Urwald auf

vermoderten Stämmen. Nov. 1885, Sept. und Nov, 1888. — E. Ule

n. 502, 1187, 1489,

Comatricha Preuss.

C. nigra (Pers.) Schröt. in Pilze Schles. I. p. 118. f. oblongata.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau auf faulen Kräuterstengeln,

Sept. 1888. — E. Ule n. 998.

Lamproderma Rost.

L. inconspicuum Schröt. n. sp.

Peridiis sparsis, stipitatis, stipite setiformi usque ad 2 mm longo

ad apicem tenuiore, curvato, atrobrunneo, levi; sporangio globoso, vix

0,5 mm diametro, columella brevissima; capillitio fasciculato ramis

repetito-dichotomis, ramulis arcuatis, reticulato-conjunctis, interdum

torulosis, atro violaceo-brunneo; sporis globosis 6 - 8 u diametro,

episporio pallide violaceo-brunneo, levi.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau auf Rinde eines Stammes.

April 1888. — E. Ule n. 830.

Fruchtkörper einzeln stehend, gestielt, Stiel haarförmig, 2 mm lang,

nach oben allmählich verdickt, gebogen, schwarzbraune Sporangien

kugelig, kaum 0,5 mm breit, Säulchen sehr kurz, fast fehlend. Haupt-

zweige des Capillitium fast büschelig entspringend, wiederholt dicho-

tom verzweigt, mit bogenförmig-netzig verbundenen Aesten, die

hier und da spindelförmig oder knotenförmig angeschwollen sind.

Sporenmasse schwarz.

Diachea Fr.

D. leucopoda (Bull) Rost. Mon. p. 191. f. 158, 172, 175.

Brasilien, St. Cathar. Tubaräo auf immergrünen Blättern.

Mai 1889. Itajahy auf trockenem Laub. Mai 1886. — E. Ule n.

1264, 593,

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 209

Didymium Schrad.

D. intermedium Schröt. n. sp.

Peritheciis gregariis, stipitatis; stipite ca. 1 mm longo, ad apicem

subulato-tenuiore, pallide flavo, sublevi; sporangio hemisphaerico,

depresso, umbilicato ca. 0,5 mm diametro, peridio teneri, hyalino;

floccis capillitii hyalinis, flexuosis, ramosis interdum torulosis; sporis

globosis 10— 12 u diametro, episporio aterrimo sive violaceo, aculeato.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau auf moderndem Laub. April

1888. — E. Ule n. 804.

Von D. macrospermum Rost. durch die fehlende Columella,

von D. commutabile B. et B. durch die Beschaffenheit der Sporen

verschieden.

Die Fruchtkörper sind, gescellig auf einem gemeinschaftlichen

Hypothallus sitzend, gestielt. Das Sporangium ist halbkugelig nieder-

gedrückt, am Grunde genabelt, etwa 0,5 mm breit. Die Fäden des

Capillitiums sind geschlängelt, spitzwinkelig verzweigt, hier und da

knotig verdickt; Säulchen fehlend.

D. farinaceum Schrad. Nov. Pl. I, gen. t. 3. f. 6.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau auf trockenem Holz. Sept.

1889. — E. Ule n. 1573.

Tilmadoche Fr.

T. nutans (Pers.) Rost. Monogr. p. 127. f. 129.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau auf verfaulten Pflanzen. Sept.

1888. — E. Ule n. 999.

Physarum Pers.

Ph. cinereum (Batsch) Pers. Syn. Fung. p. 170.

Paraguay, Paraguari auf Grasblättern. März 1883. — Balansa

n. 3762.

Ph. polymorphum (Mont.) Rost. Monogr. p. 107.

Brasilien, St. Cathar, Blumenau auf abgestorbener Rinde,

December 1888. — E. Ule n. 1577.

Stiel grau bereift, furchig.

Fuligo Hall.

F. septica (Link) Gmel. Syst. nat. p. 1466.

Brasilien, St. Cathar. Blumenau im Walde auf Erdboden.

April 1888. — E. Ule n. 805.

Synchyitriaceae.

Synchytrium De Bary.

S. Stellariae Fuck. in Symb. Myc. Add., Schröt. Pilze Schles. I.

p. 189,

Brasilien, St. Cathar. Isola auf Stellaria media W. Sept.

1886. — E. Ule n. 541.

Hedwigia Ba, AAAV. 1890. 14

Be a a a Bu ne en

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asien er Be a ne nn Be >

210 P. Hennings.

Argentina, Baguada, San Jose de Flores auf Stellaria

media W. 1880. — C. Spegazzini in Dec. Myc. Arg. n. 37. sub

S. aureo Schröt.

Peronosporaceae.

Albugo (Pers.) J. F. Gray.

A. candida (Pers.) O. Kuntze.

Argentina, Sierra de Tucuman auf Cardamine axillaris,

bei Cordoba auf Lepidium pubescens. ÖOctob 1874 u. 1879. —

G. Hieronymus.

Auf Brassica Napus u. B. oleracea u. s. w. imÄrgentinien,

auf Raphanus in Patagonien, auf Brassica sp. in Paraguay.

A. Portulacae (DC.) OÖ. Kuntze.

Paraguay pr. Paraguari auf Portulaca. — B. Balansa n. 3554.

A. Bliti (Biv.) ©. Kuntze.

Argentina, Prov. de Catamarca, Fuerte de Andalgala auf

Amarantus chlorostachys. März 1873. — Hb. Hieronymus.

A. platensis (Speg. Rev. Arg. H. N. 1891. p. 28) P. Henn.

Argentina, Prov. de Catamarca auf Oxybaphus campestris

Gr. Dec. 1872. — Hieronymus et Lorentz.

Buenos Ayres in Blättern von- Boerhawia hirsuta W.

1880. — C. Spegazzini Dec. Myc. Arg. n. 36. sub Cyst. cubico (Str.)

De Bary.

Guatemala, Champerico auf Boerhavia. — Dr. Brenning 1895.

A. Arenariae (Wallr. Fl. Crypt. Germ. 1833. p. 193) Schröt.

Cystopus Lepigoni De Bary.

Argentina, Prov. de Jugui El Volcan auf Spergularia marina

Gr. Mai 1873. — G. Hieronymus u. Lorentz.

A. convolvulacearum (Speg. F. Guar. I. p. 65) P. Henn.

Brasilien, St. Cathar. Laguna auf Convolvulacea — Itajahy

auf Convolvulus sp. Nov. 1885. — E. Ule n. 1222 u. 553.

Paraguay bei Pastorio, Paraguari, Valenzuela auf Blättern von

Convolvulus Batatas, C. sp., Ipomaea gossypioides. — B. Balansa

n. 1881, 1882, 1884.

A. brasiliensis (Speg. F. Puigg. n. 200) P. Henn.

Brasilien, St. Cathar. Säo Francisco auf Ageratum cony-

zoides. März 1884, Conyza sp.,;, Eupatorium paranense.,

August 1884. — E. Ule n. 35, 56, 142.

A. Solivae Schröt. n. sp.

Soris amphigenis sparsis vel aggregatis albis vel subflavescentibus

pustulatis 0,5—3 mm diametro, cuticula vesiculosa tectis; conidiis

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. San!

subglobosis 20—22 X 18—20 «, episporio hyalino medio annulato-

incrassato; oosporis subglobosis, atro-castaneis, 60—66 u, episporio

minute reticulato.

Brasilien, St. Cathar. Tubaräo auf Blättern von Soliva

anthemidifolia. Octob. 1890. — E. Ule n. 1711.

Die Conidienhäufchen treten in kleinen weisslichen oder gelblichen,

von der blasig aufgetriebenen Oberhaut bedeckten Pusteln auf. Die

Membran der Conidien ist farblos, in der Mitte mit ringförmiger

Verdickung. Die ÖOosporen sind dunkelkastanienbraun, mit sehr

feiner engmaschiger Netzzeichnung des Epispors.

Plasmopara Schröt.

Pl. nivea (Ung.) Schröt. Schles. I. p. 237.

Brasilien, St. Cathar. Tubaräo auf Bowlesia tenera Spr.

Juni 1890. — E. Ule n. 1410.

Peronospora Corda.

P. Alsinearum Casp. in Berl. Acad. Wiss. 1885.

Brasilien, St. Cathar. Säo Francisco auf Cerastium glomeratum.

Juli 1889. — E. Ule n. 1364.

Drepanoconis Schröt. et P. Henn. n. gen.

Mycelium intercellulare, sori epidermide primo tecti, dein

erumpentes, pulvinato-effusi; conidia ovoidea, oblonga plerumque

curvato-vermiformia hyalina. Albugini aff. ?

D. brasiliensis Schröt. et P. Henn. n. sp.

Soris folii-vel caulicolis, bullatis, primo epidermide fusca velata

tectis dein erumpentibus, pulvinato-effusis cretaceis subpulverulentis;

conidiis ovoideis, clavatis vel oblongis rectis plerumque curvatis

vermiformibus, hyalinis 2— 6 grosse guttulatis 10—28 X 8— 16 ur,

episporio levi, hyalino.

Brasilien, St. Cathar. Itajahy und Tubaräo, auf Zweigen und

Blättern von Nectandra oppositifolia. Jan. 1886, Juli 1889. — E. Ule

n. 505 u. 1482.

Der Pilz wurde von Schröter mit obigem Namen belegt, weitere

Mittheilungen ausser zwei Sporenskizzen finden sich nicht vor. Mit

Albugo hat der Pilz äusserlich grosse Aehnlichkeit und dürfte wohl

hiermit verwandt sein. Die von dem Pilz befallenen Blätter und

Stiele sind z. Th. sehr deformirt, gallenförmig angeschwollen, oft ver-

krümmt und mit unregelmässigen Pusteln bedeckt. In der Jugend sind

die Sori mit brauner aufgetriebener Epidermis bedeckt, diese zerfällt

nach und nach stückweise und blättert ab. Alsdann treten fast

kreideweisse, unregelmässig polsterförmig ausgebreitete, fast mehlige

Conidienmassen hervor. Die eiförmigen, keuligen oder oblong ge-

14*

212 P. Hennings.

stalteten Conidien sind gerade oder schwach gekrümmt, während die-

selben in entwickeltem Zustande meist wurstförmige Gestalt besitzen.

Die Enden der Conidien sind meist stumpf abgerundet, das untere

Ende häufig zugespitzt. Im Innern der Conidien treten 2—6 mehr

oder weniger grosse Tropfen auf. ÖOosporen wurden nicht beobachtet.

Ob der Pilz zu den Peronosporeen gehört, lässt sich nach vorliegendem

Material nicht bestimmt entscheiden, vorläufig möge er hier seinen

Platz finden.

Protomycetaceae.

Protomyces Ung.

P. giganteus Schröt. in Engl. Prantl Pflanzenfam. I. 1. p. 148.

Brasilien, St. Cathar. Tubaräo in Hypochaeris sp. ÖOctob.

1890. — E. Ule n. 1446.

Der Pilz bildet an Stengeln grosse und an Blättern kleine

2—4 cm lange und 5—8 mm breite polsterförmige Auftreibungen,

welche oft die Stengel ganz umgeben und starke Verkrümmungen

derselben verursachen. Die Sporen sind kugelig oder elliptisch 509—72X

50—60 u mit 5—7 u dicker, hell gelbbrauner glatter Membran.

P. macrosporus Ung. Exanth. Pfl. p. 344. t. VI. 34.

Brasilien, St. Cathar. Tubaräo auf Bowlesia tenera Spr.

Nov. 1889. — E. Ule n. 1600.

Ustilaginaceae.

Ustilago Pers.

U. culmiperda Schröt. n. sp.

Soris culmicolis, diutius inclusis, atris; sporis globosis vel late

ellipsoideis 15—20 vel 22X13—17 u episporio atro, crasso levi.

Brasilien, St. Cathar. pr. Joinville in Halmen von Andropogon

bicornis. Mai 1883. — E. Ule n. 1627.

In Halmen und Blattscheiden als ein grobes schwarzes Sporen-

pulver auftretend, die Halme bis zur Spitze ganz durchziehend, in

cylindrische, 1—2 cm lange und 1,5—2 cm dicke Rollen verwandelnd,

die von einer dünnen Haut überzogen sind. Von den zahlreichen

auf Andropogon-Arten vorkommenden Ustilago-Species hat diese

wohl die grössten Sporen. Ihre Membran ist tief schwarz, völlig

undurchsichtig.

U. bicornis P. Henn. in Hedwigia 1896 p. 50.

Brasilien, Rio de Janeiro in Inflorescenzen von Andropogon

bicornis. — E. Ule n. 1625, 1627.

Das schwarze Sporenpulver findet sich in allen Theilen der

Rispe, die gallenartig verbildet ist, und die vom Sporenpulver erfüll-

ten aufgetriebenen und verlängerten Hüllspelzen ragen nach allen

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 213

Seiten hervor. Das an Herrn Dr. OÖ. Pazschke von Herrn Ule über-

sandte Material von Campo Bello wurde mir von diesem zur Bestimmung

übersandt. Das Gras fand sich im Schröter’schen Herbar irrig als

Andropogon Macrurus nebst dem voriger Art bezeichnet und der

Pilz war U. macruri benannt.

U. guaranitica Speg. Fungi Guaranit n. 99,

Brasilien, St. Cathar. Säo Francisco, Itajahy, Serra Geral in

Blüthen verschiedener Andropogon-Arten. —E. Ule n. 1629, 1626,

1624.

Argentina, Prov. de Cordoba, zwischen San Roque und San

Antonio 1. Dec. 1878. — G. Hieronymus.

Nur die inneren Blüthentheile werden von dem Pilze angegriffen

und in dünne cylindrische Säcke umgewandelt, die die Hüllspelzen

wenig überragen, so dass die Erkrankung kaum auffällig erscheint. —

Sporen 10—13 . lang, mit olivenbraunem glattem Epispor.

U. Hieronymi Schröt. n. sp.

Soris culmi- vel foliicolis, pulvinatis, vesiculosis, oblongis

cuticula grisea vel atro-plumbea tectis, 2—4 mm longis, usque ad

1', mm crassis, sporis atris, subglobosis vel breviter ellipsoideıs,

11—15>%x8—13 41, episporio crasso, atro-castaneo, subpunctato,.

Argentinien, Prov. de Salto, Passage del Rio Juramento

auf Boutelona ciliata. 18—22 Febr. 1873. — G. Hieronymus u.

Lorentz n. 203 u. 352.

Die Sori bilden langgestreckte, polsterförmige, flachaufsitzende

Säcke an den Stengeln, Blättern, Spelzen und Grannen, die, von

einer dünnen, grauen Haut bedeckt, innen ein schwarzes Sporen-

pulver enthalten. Von U. Boutelonae Kell. et Sw. sowie von

U. Boutelonae humilis Bref. ganz verschieden.

U. paraguariensis Speg. in Fungi Guar. pug. 1. p. 28.

Paraguay, Paraguari auf Cynodon Dactylon. — Balansa

n. 3740.

Brasilien, St. Cathar. Itajahy, Cynodon Dactylon. —

E. Ule n. 1620.

U. pamparum Speg. Fung. Guar. I. n. 105 et F. Pat. n. 75.

Von C. Spegazzini in Dec. Myc. Argent. n. 4 als Ustil. Setariae

Niessl in Aehren von Setaria glauca P. B. in Pampas del Tujer

Jan. 1881 herausgegeben. Der Pilz ist aber U. pamparum Speg. und

die Pflanze Setaria geniculata.

In gleicher Pflanze, deren Samen von Prof. Philippi aus Chili

eingesandt waren, trat der gleiche Pilz im Sommer 1884 in Culturen

des Berliner bot. Gartens massenhaft auf. Die Exeinplare wurden

2a nn, u u en u en u Su a

214 P. Hennings.

;

an Dr. G. Winter von mir gesendet, von Herrn Prof. Jul. Kühn

als U. Kolazcekii Kühn bestimmt und in Rabenh. Fungi eur. exs.

n. 3401 herausgegeben. Vergl. Hedw. 1895. p. 85. P. Hennings, Fungi

goyazenses.

U. neglecta Niessl in Rabenh. Fungi eur. n. 1200.

B. Balansa, Pl. du Paraguay. 1878—1884 n. 3738, Paraguay,

als U. Setariae Niessl.

In der Gestalt der Sporen, die oft lang gestreckt, bis 13 « lang,

| 5-8 u breit sind, steht der Pilz dem U, Crameri Körn. nahe.

| Das Epispor erscheint bei schr starker Vergrösserung mit sehr feinen

Punkten bedeckt.

U. Maydis (DC.) Corda Icon. V. p. 3.

’ Brasilien, Tubaräo auf Zea Mays. Jan. 1889. — E. Ule n. 1258.

U. olivacea (DC.) Tul. in Ann. Sc. Nat. 1847. p. 88.

Brasilien, Itajahy (St. Cathar.) auf Carex spec. Febr. 1890.

— E. Ule n. 1603.

U. Lorentziana Thüm. Pilze aus Entre Rios in Flor. 1880 n. 2.

Argentina, Concepeion del Uruguay auf Hordeum com-

pressum. — Lorentz.

U. utriculosa (Nees) Tul. Ustil. p. 102. t. IV. f. 2—6.

Brasilien, St. Cathar. Säo Francisco et Tubaräo in Blüthen von

Polygonum acre H. B. K. Octob. 1885 u. Nov. 1889. — E. Ule

n. 1598, 1597.

U. Sacchari Rabenh. in Isis 1870. IV. — ?

| Brasilien, St. Cathar. Itajahy in Blüthen von Erianthus asper

| Nov. 1885. — E. Ule n. 1628.

Sori in den Fruchtknoten, diese auftreibend, mit schwarzem

Sporenpulver und kugeligen oder elliptischen 9—11 a langen und

8-9 u breiten Sporen mit dunkelbrauner, glatter Membran. Von

Schröter wurde die Art zu U. Cesati Fisch. gestellt, doch scheint

sie mir besser zu U. Sacchari Rabenh. gehörig.

U. verrucosa Schröt. n. s. p.

Soris in ovariis, vesiculoso-globosis, atris; sporis ellipsoideis

vel subglobosis angulatis subolivaceis 8—12 X 7—9 u; episporio

incrassato pallide brunneo dense verrucoso.

: Brasilien, St. Cathar. Itajahy in einzelnen Früchten von Pas-

| palum distichum L. Januar 1886. — E. Ule n. 1619.

In den befallenen Fruchtknoten, die aus den Achrchen blasig

aufgeschwollen hervorragen, Sporenmasse olivenbraun, Sporen mit

cylindrischen abgestutzten oder kugelförmigen Warzen dicht besetzt.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 215

U. microspora Schröt. et P. Henn. n. sp.

Soris in paniculis floribusque, eos destruentibus, vesiculosis,

cuticula griseo-atra tectis, dein pulverulentis olivaceis; sporis sub-

globosis vel ellipsoideis levibus, pallide olivaceis vel fuscescentibus

4-6xX31,—5 u, episporio levi.

Brasilien, St. Cathar. Itajahy in Blüthen von Paspalum sp.

Nov. 1885. — E. Ule 1621. —

Sämmtliche Blüthen der Aehren werden zerstört und zu blasigen,

mit einer anfangs aschgrauen Haut umgebenen Gallen verbildet. Die

Spindeln zeigen sich abnorm verkrümmt und stellenweise verdickt.

Die Sporen zeichnen sich durch besondere Kleinheit aus. Das Sporen-

pulver ist olivenfarbig.

U. subnitens Schröt. et P. Henn. n. sp. Soris pallide cınna-

momeis intra ovaria ortis deinde pulverulentis; sporis saepe subcon-

globatis subglobosis vel ellipsoideis 12—18 X 10—15 u, episporio

flavobrunneo subnitente, levi ca. 2 u crasso.

Brasilien, Rio de Janeiro in Früchten von Scleria cfr. pratensis

Lind. Mai 1887. — E. Ule n. 1604.

Das lebhaft zimmtbraune Sporenpulver findet sich in einzelnen

Früchten, während andere Früchte der gleichen Rispen gut aus-

gebildet sind. Die kranken Fruchtknoten schwellen zu 2—-3 mm

grossen kugeligen oder elliptischen Körperchen an, die lange ge-

schlossen sind. Zuweilen finden sich zwischen den Sporen und oft

diesen anhaftend Reste zarter Fäden,

Von U, Scleriae (DC.) Tul. und Cintractia flavo-nigrescens (B.etC.)

ist die Art völlig verschieden.

U. Ulei P. Henn. in Hedw. 1895. p. 89.

Brasilien, Säo Paulo in Blättern von Chloris sp. Mai 1887. —

E. Ule n. 1615.

Die Sori sind völlig leer, doch finden sich auf den Blättern die

durch den Pilz hervorgerufenen streifenförmigen Löcher, welche hin

und wieder noch fast kugelige, rothbraune, innen gekörnelte 8 10 u

grosse Sporen enthalten, die ganz mit denen obiger Art überein-

stimmen.

U. Schröteriana P. Henn. n. sp.

Soris in spicis, eas destruentibus, atris, pulverulentis; sporis sub-

globosis vel late ellipsoideis, olivaceo-brunneis intus punctulatis

13—15 X 11-—14 u, episporio atro-olivaceo punctulato vel sublevi ca.

1 u crasso,

Brasilien, St. Cathar. pr. Itajahy in Blättern von Paspalum sp.

Nov. 1885. — E. Ule n. 1615.

Die Aehrchen sind mit schwarzem Sporenpulver erfüllt, völlig

zerstört, aber nicht stark aufgeblasen und gallenförmig verbildet.

zu nn A a ee

216 P. Hennings.

Die Spindel ist meist nicht angegriffen, während die Spelzen ge-

wöhnlich nur in Resten vorhanden sind.

Die Art wurde von Schröter als Schröteria Paspali bezeichnet,

da nach seiner Angabe die Sporen in der Jugend zu zweien zu-

sammenhängen und etwas eingeschnürt sein sollen. Die Sporen

sind aber meiner Beobachtung zufolge einzeln, völlig rund, doch finden

sich hin und wieder unreife Sporen, die auf der einen Seite concav

sind. Jedenfalls gehört die Art nicht zu Schröteria, sondern zu

Ustilago, die ich besser nach Schröter benenne, da ausserdem

mehrere Arten auf Paspalum beschrieben sind. Von diesen ist sie

aber gänzlich verschieden.

U. Panici latifolii P,. Henn. n. sp.

Soris in staminibus germinibusque, atris, pulverulentis; sporis

pallide olivaceis dein fuscis, subglobosis vel ellipsoideis 6—8 u:

episporio subfusco minute verrucoso vel sublevi.

Brasilien, St. Cathar., pr. Tubaräo in Blüthen von Panicum

latifolium. März 1890. — E. Ule n. 1331.

Sämmtliche Blüthen der Rispen sind von schwarzem Sporenpulver

erfüllt, welches von den völlig unveränderten, nicht angegriffenen

Spelzen umschlossen wird, später verstäubt, während zerstörte Reste

der inneren Blüthentheile als schwarze Fasern zurückbleiben, —

Der Pilz fand sich im Schröter’schen Manuscript unverzeichnet und

das Exemplar nur mit der Bezeichnung Ustilago im Herbar vor,

während die Nährpflanze, als Gras bezeichnet, unbestimmt war,

U.? Taubertiana P. Henn. in Engl. bot. Jahrb. XV. 34. p. 14.

Brasilien, St. Cathar. pr. Sao Francisco in verschiedenen

Arten von Rhynchospora. Febr. 1884, Januar 1885. — E., Ule

n. 1038, 1608, 1610.

Die schwarze Sporenmasse findet sich zwischen den Spelzen oder

im Fruchtknoten eingeschlossen, bald ist diese mehr zusammengeballt,

bald pulverig; selten tritt sie in länglichen festen Pusteln an den Stengeln

und Axen auf. Die Sporen sind verhältnissmässig viel kleiner als bei

Cintractia Caricis, meist 9-11 X 8-11 u, hin und wieder bis 14 und

15 « im Durchmesser; im Uebrigen stimmen die Sporen recht gut mit

denen erwähnter Art. Dieselbe dürfte vielleicht besser zu Cintractia

zu stellen und mit C. Montagnei (Tul.) zu vereinigen sein,

Cintractia Cornu.

C. leucoderma (Berk.) P. Henn. in Hedw. 1895 pag. 335.

— Ustilago leucoderma Berk. Fung. S. Dom. n. 54. = C. Krugiana

P. Magn. in Engl. bot. Jahrb. XVII. pag. 490 t. XII.

Brasilien, St. Cathar. pr. Tubaräo, Itajahy, Säo Jose, in Halmen,

Blattscheiden, Aehrenstielen undBlüthen von Rhyncho spora gigan-

tea. Sept. 1885, 1889, Dec. 1886. — E. Ule n. 1611, 1612, 1613.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 217

C. flavo-nigrescens (B. et C.) P. Henn. Ustilago fl.-n.

B. et. C. in Linn. Soc. Journ. X. pag. 358.

Brasilien, St. Cathar. Säo Francisco in Aehren von Scleria

hirtella Sw. März 1885. — E. Ule n. 181.

Die schwarzen Sporenhaufen treten kugelig zwischen den Spelzen

hervor, die Sporen sind fast kugelig dunkelbraun oder schwarz,

6-8 u im Durchmesser, das Epispor ist mit schwarzen papillen-

artigen Warzen dicht besetzt. Der Pilz scheint mir mit dem vor-

liegenden Original, welcher von C. Wright unter n. 605 auf Cuba

gesammelt wurde, übereinstimmend. Zwar finden sich bei letzteren

Exemplaren zwischen den Sporen schr kleine, kugelige, farblose,

3—4 u grosse Sporen, die aber wohl einem auf dem Sorus lebenden

epiphytischen Schimmelpilz angehören dürften. Jedenfalls gehört

vorliegende Art zur Gattung Cintractia. — Von Schröter ist der Pilz

nicht berücksichtigt worden.

C. axicola (Berk.) Cornu in Ann. Sc. Nat. 1883. pag. 279.

t. XV. f££ 1-3. Ustilago axicola B. F. S. Dom. n. 55.

Brasilien, St. Catbar. pr. Itajahy auf Cyperus cfr. vegetus

März 1886 n. 1602; pr. S o Francisco auf Fimbristylis autumnalis

R. S. u. F. cfr. ferruginea Vahl. März 1885. — E. Ule n. 1605,

1606, 1607.

Sporenmasse schwarz am Grunde der Rispenäste und diese zu

kugeligen Ballen auftreibend. Sporen kugelig oder elliptisch, meist

10-13 « oder auch 13—17X10—15 «, Membran braun, glatt. Die

Sporen sind mit hyalinen Fäden untermischt. Der Pilz stimmt mit

dem Berkeley’schen Original von Brisbane sowie mit einem Exemplar

von St. Domingo völlig überein, auch bei diesen sind die Sporen

kugelig oder ellipsoidisch dunkelbraun, etwa 13—17 « im Durchmesser

mit glatter Membran. Nach der Beschreibung in Sacc. Syll. VI.

pag. 480 sollen die Sporen jedoch subhyalin sein.

Nach Cooke in Grev. XIX. pag. 53 sollen die Exemplare von

Domingo und Australien zu Ustilago gehören, jedoch nordamerikanische

Exemplare zu Cintractia (cfr. Sacc. Syll. IX. pag. 285). Ich finde

jedoch, dass die vorliegenden Exemplare von Domingo und Brisbane

jedenfalls zu Cintractia gezogen werden müssen. Schröter stellt

dieselben ebenfalls zu C. axicola B., scheint aber anfänglich im Zweifel

gewesen zu sein, ob diese nicht richtiger zu Ustilago Fimbristylis

Thüm. gehören. Letztere Art kenne ich nicht.

Sphacelotheca De Bary.

Sph. Hydropiperis (Schum.) De Bary vgl. Morph. d. Pilze

pag. 187.

Brasilien, St. Cathar., pr. Säo Francisco in Blüthen von

Polygonum acuminatum Kth. Dec. 1883. E. Ule n. 1599.

218 P. Hennings.

Der befallene Fruchtknoten ist dick angeschwollen, zu einem

bis 1 cm langen Säulchen umgewandelt. Die Sporen sind 10—15 u

lang, 7—10 « breit, mit violettbrauner glatter Membran.

Tolyposporium Woron.

T. minus Schröt. n. sp.

Soris in germinibus, subglobosis vix deformantibus, cuticula

cinerea tectis; glomerulis sporarum 60— 120 X 60—70 u, subfirmis,

atris; sporis 7—15 X 7— 9 u, episporio olivaceo-brunneo, levi.

Brasilien, St. Cathar. pr. Tubaräo in Früchten von Panicum sp.

Jan. 1889 — E. Ule n. 1617.

Sporenmasse in den Fruchtknoten auftretend, nur einzelne Blüthen

eines Aehrchens befallend und diese zu elliptischen, fast kugeligen,

die Spelzen wenig überragenden und wenig auffälligen Brandbeulen

auftreibend.

Die Brandgallen haben Aehnlichkeit mit Tolyp. (Sorospor.)

bullatum Schröt., doch sind sie kleiner, ebenso wie die Sporen. Es

finden sich häufig unreife Sporenballen, in denen die gallertig auf-

getriebenen, sporenbildenden Mycelien noch erkennbar sind.

Tilletia Tul.

T. Ulei Schröt. et P. Henn. n. sp.

Soris nigris ovaria destruentibus; sporis subglobosis vel ellipsoi-

deis, olivaceo-brunneis, 15- 20 X 14 18.4, episporio atrobrunneo

1,5—2 u crasso dense verrucoso,

Brasilien, St. Cathar. in Früchten von Paspalum cfr. scrobi-

culatum. — E. Ule n. 1616.

Wohl sämmtliche Früchte der Rispen sind vom Pilz befallen, im

Innern von schwärzlichem Sporenpulver erfüllt, aber in keiner Weise

auffällig verbildet oder verfärbt. Dieselben sind von den Spelzen

umschlossen und ragen hin und wieder, am Scheitel aufgespalten,

aus diesen etwas hervor. Die Sporen sind dichtwarzig, meist rundlich,

seltener länglich. Die Art steht jedenfalls der T. rugispora EIl.

aus Texas sehr nahe, scheint aber doch von dieser verschieden zu

sein. Von Schröter wurde die Art mit obigem Namen bezeichnet,

schriftliche Aufzeichnungen darüber fanden sich nicht vor.

Urocystis Rabenh.

U. Hieronymi Schröt. n. sp.

Soris in ramulis vel pedunculis, ex iis bullam curvatam, c. 3cm

longam, 1!/; cm crassam efformantibus, cuticula c. 1 mm crassa, ochra-

cea, rugulosa tectis; glomerulis ellipsoideis 22—40 X 22—30 u; sporis

centralibus singularibus, globosis vel ellipsoideis 16—26 X 15—20 u,

episporio castaneo, levi, sporis periphericis 7—12 X 6—8 u, pallide

brunneis,

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I., 219

Bolivia auf der Cuesta zwischen Santa Rosa und Carapari in

Stielen von Solanum sp. 17.—18. Juni 1873. — G. Hieronymus u.

P. G. Lorentz.

Die Sporenmasse findet sich in den Enden kurzer Zweige

(Blüthenstiele?), diese zu dicken, wurstförmigen Gebilden, die ca. 3 cm

lang, 1—1'J, cm dick sind, umwandelnd. Die Gallen sind am unteren

Ende stumpf und scharf abgegrenzt, oben etwas verschmälert, stark

gekrümmt. Das schwarze feste Sporenpulver wird von einer dicken,

festen, warzigen, gelbbraunen Haut umgeben.

U. Oxalidis Pazschke in Hedw. 1892 pag. 92.

Brasilien, St. Cathar. pr. Tubaräo in Blüthen- und Blattstielen

von Oxalis spec. Aug. 1890. — E. Ule n. 1035.

Die Art wurde vorher von Schröter im Manuscript als U. Ulei

bezeichnet und beschrieben.

U. Hypoxidis Thaxter in Ann. Report. Conn. Agr. Stat. 1889.

pl. II. f. 12-—14; Rabenh. Wint. Fung. eur. n. 3704.

Brasilien, St. Cathar. pr. Tubaräo. Octob. 1890 in Ovarien

von Hypoxis sp. — E. Ule n. 1034.

Entyloma De Bary.

E. Calendulae (Oud.) Schröt. in Bot. Ztg. 1874 p. 105.

Argentinien, Cotanhange, Sierra chica de Cördoba in Blättern

von Parthenium HysterophorumL. Feb.1882. — G. Hieronymus.

E. Physalidis (Kalchbr. et Cooke) Wint. in Hedw. 1883.

p. 130. = E. australe Speg.

Argentinien, Prov. de Catamarca auf Blättern von Physalis

viscosa. Jan. 1876. — Lorentz.

E. Linariae Schröt. in Cohn Beitr. II. p. 371.

Argentinien, Sierra Achala de Cördoba in Blättern von

Veronica peregrina. 25. März 1878. — G. Hieronymus.

E. guaraniticum Speg. Fung. guaranit. pug. I. p. 65.

Paraguay pr. Guarapi in Blättern von Bidens leucantha W.

(nicht Araliacea). Dec. 1882. — B. Balansa n. 3731.

Sporen 10—15 u; Epispor bis 4 « dick.

E. crastophilum Sacc. in Mich. I. p. 540 = Thecaphora Dacty-

lidis Pass. in Fisch. Aperc. p. 34.

Argentina, Concepcion del Uruguay, Quinta del Colegio in

Blättern von Briza minor L. 11. Nov. 1876. — P. G. Lorentz.

Bildet 3—4 mm lange, etwas verdickte, elliptische schwarze

Flecke. Sporen kugelig oder durch den Druck schwach eckig,

11—13 u; Membran 2—2,5 u dick, glatt, dunkelkastanienbraun,

220 5 P. Hennings.

E. speciosum Schröt. et. P. Henn. n. sp.

Soris striiformibus saepe confluentibus atris sub epidermide

nidulantibus; sporis conglobatis subglobosis vel late ellipsoideis,

acutangulis, castaneis vel atro olivaceis, intus punctulatis 8S— 12 X

7—10 #, episporio atro olivaceo, levi.

Brasilien, Prov. St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von Pani-

cum sp. ? Febr. 1889. — E. Ule n. 1333.

Die unter der Epidermis nistenden Sori rufen lange, streifen-

förmige, meist zusammenfliessende schwärzliche Flecke auf beiden

Seiten der Blätter hervor, die nicht verdickt und nicht warzig

erscheinen. Von Schröter wurde die Art als E. speciosum be-

zeichnet, jedoch fehlen alle Angaben über seine Untersuchung.

Doassansia Cornu.

D. Sagittariae (Westend.) Fisch. Ber. D. b. Ges. II. p. 405.

var. montevideensis.

Argentina, Laguna de Pocho pr. Cördoba in Blättern von Sagit-

taria montevideensis Ch. et Sch. April 1877. — G. Hieronymus.

D. Ulei Schröt. n. sp.

Soris caulicolis, pulvinatis vel subeylindraceo-pustulatis 4— 10 X

1,5—2 mm diametro, epidermide tectis; glomerulis sporarum com-

pactis subglobosis vel ellipsoideis acutangulis, plerumque 22—46 X

20—30 a, pallide brunneis; sporis 5-7 u latis, compressis, episporio

pallide brunneo, levi.

Brasilien, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Stengeln von Calli-

triche sp. Sept. 1889. — E. Ule n. 1601.

Sporenmasse die Stengel auftreibend, länglich polsterförmige

oder fast cylindrische Pusteln bildend, die mit der Epidermis be-

deckt, sehr dicht gefügte kugelige oder längliche Sporenballen, die

meist eckig sind, enthalten. Diese sind hellbraun, liegen in grossen

Haufen zusammen und sind aus zahlreichen Sporen gebildet. Die

Sporen sind sehr fest vereinigt durch Druck, 5—7 4 breit. (Vielleicht

dürfte die Art besser zu Sorosporium gestellt werden. P. Henn.)

D. ? Lilaeae P. Henn. n. sp.

Soris amphigenis, subpustuliformibus, fuscescentibus in maculis

flavescentibus, oblongis; sporis globosis, subacutangulis, atris 6—8 u,

episporio leve.

Argentina, Sierra Achala de Cördoba auf Stengel von

Lilaea subulata H.B.K. 23. März 1876. — G. Hieronymus.

Das Material ist äusserst dürftig und mangelhaft, so dass danach

eine genaue Beschreibung unmöglich ist. Von Schröter wurde der

Pilz als Protomyces bezeichnet und zu Doassansia gelegt, aber nicht

beschrieben.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 221

Schröteria Wint.

Sch. Cissi (DC.) De Toni in Sacc. Syll. VII. p. 501.

Brasilien, St.Cathar. Minas inStengeln von Cissus sicyoides.

Mai 1890. — E. Ule n. 1036.

Sporen 14-17 X 11—15 #, zu zweien zusammenhängend, an

der Vereinigungsstelle wenig eingeschnürt, später durch Aufquellung

der Membran nur lose verbunden. Membran in der oberen Hälfte

schwarzbraun, undurchsichtig, glatt oder undeutlich punktirt, in der

unteren Hälfte (nach dem Aufquellen) hellolivenbraun.

Von Schröter wurde die Art zu Schizonella gestellt.

Thecaphora Fingerh.

Th. Hieronymi Schröt. n. sp.

Soris in ovariis, pustulatis, ellipsoideis ca. 2 mm longis castaneis;

glomerulis tri-vel quadrangulis 20—30 vel 40 u diametro, plerumque

3—6 raro 2—3 vel 8-sporis compositis; sporis conglobatis, unilate-

raliter verrucis pyramidalibus acutiusculis usque ad 1 « longis ornatis,

13—15 u latis, episporio pallide castaneo.

Uruguay, Montevideo inFrüchtenvon Richardsonia stellaris

Juli 1876. — Arechavaleta in Herb. G. Hieronymus.

Sporenmasse in den Fruchtknoten, diese in elliptische, etwa

2 mm lange Brandbeutel verwandelnd. Ballen 3—4 eckig, Sporen

dicht verbunden an der freien Seite mit starken pyramidalen, zu-

gespitzten, etwa 1 « langen und breiten Warzen besetzt.

Sorosporium Rud.

S. argentinum Speg. Fungi Argent. pug. IV. n. 52.

Argentina, Prov. de Cördoba bei Altagracia in Früchten von

Tricholaena sp. ? 23. März 1875. — G. Hieronymus.

Sporenmasse in den Fruchtknoten, selten in den Rispenästen

auftretend, erstere in elliptische, 3—5 mm lange, 1— 1,5 mm dicke

Brandbeulen umwandelnd, die, mit dünner Haut überzogen, von

schwärzlichem Sporenpulver erfüllt sind. Sporenballen von sehr un-

gleicher Grösse, 50-120 u lang, 30—60 u breit, aus sehr locker ver-

klebten Sporen gebildet. Sporen kugelig oder elliptisch, durch den

gegenseitigen Druck meist vieleckig, 6—11 X 6—9 u, Membran

dunkelolivenbraun, glatt.

= Ceachri P. Henn. n. sp.

Soris in floribus, vesiculoso inflatis, cuticula alutacea tectis, dein

pulverulentis, atris; glomerulis subglobosis vel irregulariter oblongis

20—45 u diametro, atris; sporis subglobosis vel ellipsoideis saepe

acutangulis, olivaceo-brunneis intus punctulatis 8—-10 X 6—9 ı,

episporio brunneo, levi.

Brasilien, St. Cathar. Isola in Achrchen von Cenchrus

echinatus. Febr. 1887. — n. 1623.

P. Hennings.

Der Pilz befällt fast sämmtliche Blüthen, zerstört diese sowie die

Grannen vollständig, indem er die Aehrchen in blasig aufgetriebene,

fast kugelige mit gelbbrauner Haut überzogene Brandbeulen ver-

wandelt, an denen die zerstörten Grannen verbleiben. Die Säcke sind

von schwarzen Sporenballen, die ziemlich fest sind und aus sehr

zahlreichen Sporen bestehen, erfüllt. Häufig werden die noch von

den Blattscheiden umschlossenen jungen Blüthenstände von dem

Pilz völlig zerstört. Diese stellen alsdann cylindrische lange Röhren

dar, die von der schwarzen Sporenmasse erfüllt und von leder-

farbiger Haut umschlossen sind. Die zerstörten Grannen ragen dann

langfaserig aus den von den Blättern umhüllten Blüthenständen

hervor. Ob diese Art vielleicht doch mit Tolyposporium Cenchri

Bref. identisch ist, vermag ich nicht festzustellen, doch ist dies

möglich.

S. Rhynchosporae P. Henn. n. sp.

Soris omnino inclusis, ovaria destruentibus atris; glomerulis

duris, subglobosis vel oblongis, aterrimis 25—30 « diametro; sporis

subglobosis, oblongis acutangulis, plerumque triangularibus, fusco

olivaceis, intus punctulatis, 8—13 X 7—10, episporio atro olivaceo

1—2 u crasso, minute verrucoso vel sublevi.

Brasilien, Rio de Janeiro in Früchten von Rhynchospora

glauca. Juli 1887. — E. Ule n. 1614.

Die befallenen Blüthenstände werden durch den Pilz in keiner

Weise äusserlich verändert und nur die von den Spelzen um-

schlossen bleibenden Blüthentheile zerstört. Die tiefschwarzen Sporen-

ballen bestehen aus zahllosen, fest mit einander verbundenen,

meistens dreieckigen Sporen. Von Schröter wurden die gleichen

Exemplare theils als Sorosporium, theils als Cintractia bezeichnet,

doch finden sich keine Notizen über seine Untersuchungen vor.

Tuberculina Sacc.

T. persicina (Dittm.) Sacc. Fungi ital. t. 964.

Brasilien, St. Cathar. Tubaräo auf Aecidium Solaninum Speg.

Sept. 1890. — E. Ule n. 1030.

Graphiola Poit.

G. Phoenicis (Moug.) Poit. in Ann. Sc. Nat. 1824. pag. 473.t.26 f.2.

Brasilien, St. Cathar. Isola in einem Garten auf Palmen-

blättern. Juli 1886. — E. Ule n. 510.

Ustilagopsis Speg.

U.? compactiuscula Speg. Fung. Guar. In. 97.

Paraguay pr. Guarapi in Früchten von Panicum sp. April 1881.

— B. Balansa n. 2754.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 223

Der Pilz ist zweifellos keine Ustilaginee, sondern gehört in den

Entwickelungskreis eines Claviceps. Es finden sich in zahlreichen

Früchten Sclerotien aus einem dichten Gewebe aus 2,5—4 «u breiten,

vielfach verzweigten, ziemlich dickwandigen Hyphen gebildet. Die

Oberfläche der Sclerotien ist gelblich-weiss, viele Früchte aber sind

normal gebildet. An der Spitze mancher Sclerotien findet sich ein

Hymenium mit elliptisch spindelförmigen, 9-12 « langen, 2,5—3,5 u

breiten farblosen Conidien, welches der Sphacelienfruchtform von Clavi-

ceps purpurea entspricht. (Vergl. Ustilaginoidea Setariae Bref.)

Ein ganz ähnliches Sclerotium wurde von Herrn Schlechter in

Natal auf Achren von Paspalum gesammelt und von mir ın

Hedwigia 1895 p. 327 beschrieben.

Uredinaceae.

Uromyces Link.

U. Trifolii (Hedw.) Lev. Wint. Pilze I. p. 159.

Argentina, Cuesta de Garabatal, Sierra de Tucuman. Jan.

1873 auf Trifolium sp. — Hieronymus.

”

Teleutosporen in ihrer Form ganz gleich denen des europäischen

Pilzes.

U. praeäminens (Duby) Lev. Disp. p. 371.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Euphorbia piluliferaL.

Febr. 1889. — E. Ule n. 1203.

Argentina, Quebrado de la Tala oberhalb der Stadt Catamarca,

aufEuphorbia ovalifolia Engelm. 21. Nov. 1872. — G. Hieronymus

u. Lorentz.

Aecidien, Uredo- und Teleutosporen.

U. appendiculatus (Pers.) Link Obs. Il. p. 28.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Phaseolus

Caracalla L. Juli 1888. — E. Ule n. 955.

Argentina, Concepcion del Uruguay auf Blättern von Vigna

luteola Benth. April 1875. — P. G. Lorentz.

Paraguay pr. Guarapi auf Blättern von Phaseolus sp. —

B. Balansa Pl. du Paraguay n. 3460 sub Uredine rufa Speg.

U. Hyperici (Schwein.) Curt. in Burrill Fl. of Illinois p. 157.

Argentina, Sierra de Tucuman auf Blättern von Hypericum

carinatum Gr. Jan. 1874. — G. Hieronymus u. Lorentz.

Aecidien auf der Unterseite der Blätter, auch am Stengel, Uredo-

und Teleutosporenhäufchen auf der Unterseite der Blätter; Teleuto-

sporen 20—26 X 12—15 11, ellipsoidisch oder eiförmig, Membran lebhaft

kastanienbraun, Stiel 15 —28 X 4-5 u, bräunlich.

224 P. Hennings.

U. Pontederiae Speg. Fung. Guar. II. n. 31.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von Pöntederie

cordata. Febr. 1889. — E. Ule n. 1251.

Paraguay pr. Aregua auf Pontederia cordata. — B. Balansa

n. 3929,

U. Mulini Schröt. n. sp.

Soris uredosporiferis, amphigenis, pulvinatis oblongis primo epi-

dermide tectis, vesiculosis dein pulverulentis cinnamomeis, uredosporis

ellipsoideis vel ovoideis 24—35 X 22-—- 26 4, episporio incrassato

ochraceo, aculeato; soris teleutosporiferis atrobrunneis, teleutosporis

subglobosis vel ovoideis, vertice rotundatis 28—34 X 24—30 u;

episporio atrocastaneo, vertice incrassato, levi, pedicello usque ad

30 « longo, ad apicem brunneolo, persistente.

Argentina, Prov. de San Juan pr. Las Caves auf Blättern von

Mulinum integrifolium. — Echegaray. "

Uredo- und Teleutosporen in denselben Sori, die anfangs von

der blasig aufgetriebenen Oberhaut umgeben sind. Uredosporen sind

ellipsoidisch oder eiförmig, mit in der Mitte der Seitenwand gelegenem

Keimporus. Die fest anhaftenden Teleutosporen sind meist kugelig,

doch auch nicht selten eiförmig, nach dem Stiele etwas verschmälert,

am Scheitel verdickt und abgerundet.

U. Cisneroanus Speg. Fung. Arg. p. III. n. 36.

Argentina pr. Buenos Ayres auf Blättern von Sapium sp.

1888. — K, Bettfreund n. 247.

Uredo- und Teleutosporen in denselben Sori. Uredosporen meist

keulenförmig, in der Mitte etwas breiter und oft verbogen, 2350 yı

lang; 2 deutliche Keimporen in der Mitte der Seitenwand, ocherfarben,

grobstachelig,; Teleutosporen am Scheitel mit mehr oder weniger

deutlich abgesetzter, halbkugeliger, bis 7 « dicker, hellbrauner Spitze.

U. Arachidis P. Henn. n. sp.

Maculis subflavis vel nullis; soris amphigenis gregariis vel

sparsis, minutis, ochraceis, primo epidermide inflata tectis dein

liberis; teleutosporis subglobosis, ellipsoideis vel ovoideis, laete

brunneis, 22—28 X 20—26 u episporio cinnamomeo, tenui sublevi

vel minute verrucoso, pedicello fragili, hyalino, brevi.

Surinam, auf Blättern von Arachis hypogaea. — Weigelt in Herb.

Reichenbachiano.

U. Hedysari-paniculati (Schwein.) Farlow in Ellis N. Amer.

Fungi n. 246.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Desmodium sp.

Juli 1887. — E. Ule n. 666.

Teleutosporenhäufchen schwarz, die ganze untere Blattfläche

heerdenweise bedeckend. Uredosporen fast kugelig 16—20 u,

Zur Beachtung!

Repertorium IY wird mit dem nächstfolgenden

Heft Ende October herausgegeben werden.

Die Redaction.

Anzeigen.

Im unterzeichneten Verlage ist erschienen und durch jede

Buchhandlung des In- und Auslandes zu beziehen:

Lichenologische Untersuchungen

von

Dr. Gustav Lindau

Privatdocent der Botanik an der Universität Berlin.

Heft I.

Ueber Wachsthum und Anheftungsweise der Rindenflechten.

Mit 3 lithographirten Tafeln.

Gross 4° VI und 66 Seiten. Preis M. 8.—.

Dresden-N., 1896. C. Heinrich

Verlagshandlung.

Von dem Unterzeichneten sowie durch jede Buchhandlung

des In- und Auslandes ist zu beziehen:

Die Laubmoose

Grossherzogthums Baden

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Wilh. Baur

Apotheker in Ichenheim.

Sonderabdruck aus „Mittheilungen des Badischen Botanischen Vereins‘.

Jahrgang 1894.

80 Seiten 8°, Preis Mark 1,60.

REN. C. Heinrich

Verlagshandlung.

Begründet 1852 durch Dr. Rabenhorst |

als

»Notizblatt für kryptogamische Studien.« x

aa nn m — m — una |

HEDWIGIA.

| Kryptogamenkunde

nebst

Repertorium für kryptog. Literatur.

Redigirt

von

Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von

Paul Hennings und Dr. G. Lindau

in Berlin.

vo 1896. S%- Heft 5.

Band

‚ Inhalt: P. Hennings, Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I (Schluss). — Paul |

N Richter, Beiträge zur Phykologie. — J. Bresadola, Fungi Brasilienses

| lecti a el. Dr. Alfredo Möller. — P. Hennings, Clavogaster, eine neue

| Gasteromycetengattung, sowie mehrere Agaricineen aus Neu-Seeland (An-

fang). — Repertorium No. 4/5.

Druck und Verlag von C. Heinrich,

Dresden -N., kl. Meissnergasse 4.

Erscheint in zweimonatlichen Heften.

Abonnement für den Jahrgang 12 Mark

durch alle Buchhandlungen.

Ausgegeben am 30. October 1896.

An die Leser und Mitarbeiter der

„Hedwigia”.

Zusendungen und Anfragen redactioneller Art werden unter

der Adresse:

Prof. Dr. G. Hieronymus,

Berlin, Botanisches Museum, Grunewaldstrasse 6/7,

mit der Aufschrift

„Für die Redaction der Hedwigia“

erbeten.

Um eine möglichst vollständige Aufzählung der krypto-

gamischen Literatur und kurze Inhaltsangabe der wichtigeren Arbeiten

zu ermöglichen, werden die Verfasser, sowie die Herausgeber der

wissenschaftlichen Zeitschriften höflichst im eigenen Interesse er-

sucht, die Redaction durch Zusendung der Arbeiten oder Angabe

der Titel baldmöglichst nach dem Erscheinen zu benachrichtigen;

desgleichen sind kurz gehaltene Selbstreferate über den wichtigsten

Inhalt sehr erwünscht.

In Rücksicht auf den Gesammtumfang der Zeitschrift sollen die

einzelnen Abhandlungen die Länge von 3 Bogen im Allgemeinen

nicht überschreiten, desgleichen die einer Abhandlung bei-

zugebenden Tafeln nicht mehr als zwei betragen. Die Original-

zeichnungen für die Tafeln sind im Format 13 x 21 cm mit mög-

lichster Ausnutzung des Raumes und in guter Ausführung zu liefern,

auch sind die Manuscripte nur auf einer Seite zu beschreiben.

Die Autoren erhalten auf Wunsch 25 Sonderabzüge kostenlos,

doch werden solche in beliebiger Anzahl zum Selbstkostenpreis

geliefert.

C. Heinrich’s Verlag.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 295

Membran hellbraun, schr fein stachelig mit 4 kleinen Keimporen;

Teleutosporen fast kugelig oder kurz ellipsoidisch 20—24 X 18—22 ur,

Membran lebhaft kastanienbraun, glatt.

U. Howei Peck 23 Rep. St. Mus. p. 58. — Uredo Asclepiadis

Kunze Fung. Surin. Weigelt Exs. 1827.

Brasilia, St. Cathar. Laguna auf Blättern von Asclepias

campestris D. C. März 1889. — E. Ule n. 1221.

Uromyceshäufchen auf der Unterseite der Blätter, bald frei und

staubig. Sporen länglich-ellipsoidisch oder eiförmig, meist 25-30 X

18—22 u, Membran dunkelkastanienbraun, undeutlich punktirt, am

Scheitel schwach verdickt.

U. Dietelianus Pazschke in Fungi eur. n. 3719.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von Bauhinia sp.

März 1889. — E. Ule n. 1013 u. 1240.

U. tener Schröter n. sp.

Maculis fuseis rotundatis, soris teleutosporiferis hypophyllis

plerumque orbiculariter dispositis, punctiformibus atris, pulvinatis;

teleutosporis ellipticis subglobosis, ovoideis vel piriformibus 20-25 X

12-16 «, vertice rotundatis, episporio pallide ochraceo, levi, pedicello

persistente 25 « longo, 2,5 u crasso, hyalino vel subfuscidulo.

Brasilia, Serra de Öratorio auf Blättern von Manettia

gracilis. April 1889, — E. Ule n. 1243.

Die sehr kleinen, punktförmigen Sori stehen in grosser Zahl

meist in rundlichen Flecken auf der Unterseite der Blätter. Die

Sporen sind fast kugelig, eiförmig oder birnförmig nach dem Stiel

verschmälert, am Scheitel abgerundet, mit glatter, etwa 2 « dicker

Membran. Manche Sporen sind ausgekeimt und zeigen am Scheitel

einen offenen Keimporus.

U. Kurzii P. Henn. in Hedw. XXXII. p. 229.

Argentina, Cordillera de la Rioja an Stengeln und Blüthen-

stielen von Senecio salsus Gr. Febr. 1879. — G. Hieronymus.

Die Stengel und Blüthenstiele sind mit den polsterförmigen,

braunen Sori dicht besetzt, erstere monströs verbogen und verdickt.

U. Cestri Mont. Fl. Chil. p. 49.

Argentina, Cördoba und Catamarca auf Blättern von Cestrum

Pseudo-Quina. Nov. 1871, Mai 1881. — G. Hieronymus.

U. galericulatus Schröt. n. sp.

Soris striiformibus ca. 2 mm longis, epidermide vesiculosa tectis,

atrobrunneis; uredosporis ellipsoideis vel elongato ovoideis 26-35 X

18—21 u, episporio brunneo, aculeato; teleutosporis ovoideis vel

subfusoideis 33—46 (plerumque 3640) X 16—20 u; apice rotundato,

valde incrassato, episporio brunneo, levi; pedicello 20-35 X 5-6 u

pallide brunneolo.

Hedwigia Bd, XXXV, 1896. 15

EEE) 5 ode a0 dry all,

226 P. Hennings.

Argentina, Sierras Pampeanas bei Carchud auf Blättern von

Scirpus maritimus. — Lorentz,

Uredosporen elliptisch oder langgestreckt eiförmig bei Durch-

feuchtung mit 2 Keimporen an den Seiten, Membran gleichmässig

dick, braun, stachelig,; Teleutosporen fest anhaftend, sehr dicht

stehend, eiförmig in den Stiel verschmälert oder fast spindelförmig;

Membran kastanienbraun glatt, am Scheitel in eine etwas abgesetzte,

abgerundete, dunklere, 9—11 u dicke Spitze verwandelt.

U. rhynchosporicola P. Henn. n. sp.

Soris amphigenis, striiformibus saepe confluentibus, atrocinna-

momeis, longitudinaliter rimosis epidermide rupta cinctis,; teleuto-

sporis subglobosis ovoideis vel ellipsoideis saepe acutangulis, intus

flavis dein fusco-brunneis 15—23 X 14—19 u; episporio sub-

hyalino, vel fuscidulo verruculoso ca. 3 u crasso.

Brasilia, auf Blättern von Rhynchospora sp. — E. Ule. n. 7.

Von U, Rhynchosporae EIl. et Ev. ist die Art jedenfalls verschieden.

Die Sori treten in streifenförmigen Polstern an den Blättern auf, welche

hin und wieder zusammenfliessen und der Länge nach aufbrechen.

U. Junci (Desm.) Tul. in Ann. Sc. Nat. 1854 p. 146.

Brasilia, St. Cathar. auf Juncus sp. — E. Ule 1254.

Paraguay, Posta Cu auf Juncus. 2, März 1888. — Balansa

n 4305.

Auf den Ule’schen Exemplaren findet sich nur Uredo, auf dem

reichlich Darluca Filum parasitirt. Die Sporen sind elliptisch oder

eiförmig 19 — 24 X 13— 16 «, braun, schwach stachelig.

U. Euphorbiae Cooke et Peck in 30 Rep. p. 9%.

Brasilia, St. Cathar. Isola, Uredo auf Euphorbia pilulifera

L. Jan. 1887. — E. Ule n. 587.

Argentina, Prov. de Tucuman bei La Cruz Graneros u. in der

Sierra de Cördoba auf Euphorbia pilulifera L. — Hieronymus

u. Lorentz. :

U. Cajaponiae P. Henn. n. sp.

Soris hypophyllis sparsis, rotundato-pulvinatis, cinnamomeis,

pulverulentis; teleutosporis subglobosis vel late ellipsoideis, brunneis

28-36 X 26—32 u raro 36—40 u, episporio atrocinnamomeo, dense

verrucoso, 3-—4 u crasso,.

Brasılia, St. Cathar. auf Blättern von Cajaponia sp. (Cucur-

bitacea). — E. Ule n. 302.

Die Sori stehen auf der Unterseite der rauhen Blätter zerstreut,

dieselben sind dunkelzimmetbraun, meist etwas eckig, etwa 1—1'/; mm

im Durchmesser. Die meist völlig kugeligen Sporen besitzen eine

dunkelkastanienbraune Membran, die dicht mit braunen Stacheln

besetzt ist. Der Keimporus liegt in der Mitte,

Beitrage zur Pilzflora Südamerikas 1.

U. rostratus P. Henn. n. sp.

Soris hypophyllis, sparsis, rotundato -pulvinatis ochraceis vel

subeinnamomeis ca. 1 mm diametro, epidermide papillato-velata

ceinctis; teleutosporis subclavatis vel oblongis, hyalinis vel pallide

flavescentibus 26—35 X 13—18 u, apice apiculato-rostratis, rostro

usque ad 10 « longo curvulo vel recto, hyalino, episporio levi, hya-

lino vel subfusceidulo, pedicello tenui, hyalino curvato vel recto

15—28 X 2—3 u.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Eriosema sp.

Juli 1887. — E. Ule n. 705.

Die Sori sind klein, polsterförmig, rost- oder zimmetbraun; die

Sporen meist völlig farblos mit dünner glatter Membran, an der

Spitze abgesetzt geschnäbelt. Der Schnabel löst sich oft leicht ab

und die Spitze der Spore erscheint dann ausgehöhlt. Der Stiel ist

sehr dünn, farblos.

U. affinis Wint. in Hedw. 1885 p. 259.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von Hypoxis

sp. Octob. 1890. — E. Ule n. 1033.

Die Sori, welche lange von der aufgeblasenen Epidermis bedeckt

bleiben, finden sich beiderseits auf Blättern, sie sind zerstreut stehend,

ellipsoidisch, braun. Die Sporen sind fast kugelig, eiförmig oder

ellipsoidisch.

U. Borreriae P. Henn. n. sp.

Soris hypo-vel epiphyllis in maculis brunneis vel fuseis irregularibus,

minutis, pulvinatis, ochraceis diutius tectis, uredosporis subglobosis vel

ovoideis, brunneis 20—28 X 17=25, episporio minute verrucoso.

Teleutosporis subglobosis vel ovoideis saepe acutangulis, apice

rotundato-obtusis vel applanatis atrobrunneis, 21—28 X 17-24 u,

episporio atrocastaneo subverrucoso, pedicello brevi, subhyalino vel

brunneolo, 5-6 u crasso.

Brasilia, Rio de Jan. auf Blättern von Borreria verticillata

Meyer (Rubiac.). Juli 1889. — E. Ule n. 688.

Die Sori zeigen sich sowohl oberseits wie unterseits auf den

Blättern. Die Uredosporen sind fast kugelig, etwas eckig, hell oder

dunkelbraun, mit warziger, kastanienbrauner Membran, ungestielt;

die Teleutosporen sind von ähnlicher Form, doch erscheint die

Membran mehr glatt, weniger warzig zu sein. Der Stiel ist kurz,

fast farblos, oben meist bräunlich,

U. Glycyrrhizae (Rabh.) P. Magn. in Bericht d. Deutsch. Bot.

Gesellsch. VIII. 377. t. XX.

var. argentina P. Henn.

Soris hypophyllis sparsis pustulatis dein epidermide rupta cinctis,

subeinnamomeis; uredosporis subglobosis minute verrucosis, laete

15*

228 P. Hennings.

brunneis 25—30 X 23—28 u; teleutosporis intermixtis, oblongis, ellip-

soideis, ovoideis vel subglobosis, laete brunneis, apice interdum in-

crassatis minute papillatis vel sublevibus, 28-35 X 24—22 u, episporio

2—3 u crasso, rufobrunneo, pedicello brevi, fragili, hyalino.

Argentina, Prov. de Mendoza auf Blättern und Stielen von

Glycyrrhiza astragalina Gill. et Hook. Jan. 1892. — F, Kurtz

n. 7066.

Diese Form ist besonders dadurch von der typischen Art unter-

schieden, dass die Sori sehr zerstreut stehen, die Uredosporen weniger

warzig und viel grösser, ebenso die Teleutosporen viel grösser sind,

da sie bei der typischen Art nur 17 X 15-17 « im Durchmesser

besitzen. Vielleicht ist diese Varietät besser als besondere Art auf-

zustellen.

Puccinia Pers.

P. pallidissima Speg. Fung. Arg. Pug. IV. p. 65.

Argentina, Prov. Cördoba bei San Jos&e auf Blättern von

Stachys arvensis L. — G. Hieronymus.

P. macropoda Speg. Fung. Arg. Pug. II. n. 34.

Argentina bei Cördoba, Uredo auf Blättern von Iresine celo-

sioidis. 16. April 1877. -—- G. Hieronymus.

P. gibberulosa Schröt. Entwickelung einiger Rostpilze p. 62.

Argentina, Sierra Famatina auf Blättern von Ranunculus

lancipetalus Gr. 21. Jan. 1874. -- G. Hieronymus.

P. graminis Pers. Disp. Fung. p. 39. t. 3. f. 3.

Argentina, Concepcion del Uruguay auf Blättern von Avena

barbata. Nov. 1876. — P.G. Lorentz; Quebrada del Salado in der

Provinz San Luis auf Andropogon contortus. — Galander.

’. Rubigo-vera (DC.) Wint. Pilze I. p. 217.

Argentina, Concepcion del Uruguay, Sierra Achala, bei Cor-

doba, Prov. de Salta, Prov. de la Rosa auf Blättern verschiedener

Gramineen. — G. Hieronymus u. Lorentz.

P. Phragmitis (Schum.) Körn. in Hedw. 1876. p. 179.

Argentina, Rio Sauce chico bei Nueva Roma auf Blättern von

Arundo occidentalis. 5. April 1879. — Lorentz u. Niederlein.

P. Psidii Wint. in Hedw. 1884. p. 171. Fung. eur. n. 3126,

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Psidium

pomiferum. — E. Ule n. 14.

P. sanguinolenta P. Henn. n. sp.

Maculis hypophyllis late effusis sanguinolentis, soris plerumque

epiphyllis- raro hypophyllis, sparsis vel aggregatis, pustulatis sub-

atris, epidermide fusca, velata cinctis; teleutosporis oblongis, interdum

ovoideis, apice papillatis ve] sübro@tlähle, raro subobtuso -rotundatis,

io en

u 2 m ee RO be A BE Sa a ann aa Si ie ee Bein a a a

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 229

medio paulo vel vix constrictis, rufobrunneis vel subcastaneis,

35—50 X 24-32 u, episporio levi vel granuloso-punctato 4—5 u

crasso, pedicello 30—50 u longo usque ad 8 u crasso, ad apicem

rufobrunneo, ad basin hyalino, interdum inflato.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Myrcia sp.?

Mai 18857 — E. Ule n. 675.

Eine sehr schöne Art, welche auf der Unterseite der Blätter un-

regelmässige, ineinanderfliessende und oft die ganze Fläche über-

ziehende blutrothe Flecke hervorruft. Die pustelartigen Sori stehen

gewöhnlich heerdenweise auf der Oberseite der Blätter, seltener und

dann einzeln auf der Unterseite. Diese sind fast schwärzlich oder

dunkel zimmtbraun, am Grunde von der zerrissenen, aufgeblasenen

Epidermis umgeben. Die Sporen sind tief schwarzbraun, dunkelroth

oder kastanienbraun, meist oblong oder verlängert eiförmig, am

Scheitel mit verdickter Papille, die hin und wieder fast zu einem

Schnabel verlängert ist. Seltener ist die Spitze abgerundet stumpf und

schwach verdickt. Die Membran ist körnig punktirt, doch erscheint

sie hin und wieder fast glatt, dunkel kastanienbraun. Der Stiel ist

oben meist rothbräunlich, unten mehr farblos, oft aufgeblasen.

P. Joanesiae P. Henn. n. sp. ;

Maculis subflavis vel fuscidulis, irregularibus; soris uredospori-

feris hypophyllis sparsis, pulvinatis brunneis, pulverulentis; uredo-

sporis subglobosis vel late ellipsoideis, fuscobrunneis, 15—18 u dia-

metro, episporio verrucoso, soris teleutosporiferis sparsis vel sub-

gregariis, pulvinatis, atris; teleutosporis oblongis vel late ellipsoideis,

apice obtusis vel subapplanatis, medio constrictis, rufobrunneis vel

castaneis 18—25 X 15—22 u, episporio atro-castaneo dense verrucoso

3 a crasso, verrucis hemisphaericis ca. 1 « diametro, pedicello cur-

vato vel recto, hyalino usque ad 30 u longo.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Joanesia

cfr. brasiliensis (Euphorbiacea). Octob. 1868. — E. Ule n. 481b.

Auf der Unterseite der Blätter finden sich spärliche, unregelmässige

gelbliche oder bräunliche Flecke, in denen theils zerstreut, theils zu

mehreren die Sori stehen, die theils braun und etwas staubig, theils

schwarz sind.

P. Thlaspeos glaucophylli P. Henn. n. sp.

Soris foliicolis pulvinato-bullatis, rotundis, sparsis vel aggregatis,

diu epidermide cinerea tectis ca. 1 mm diametro, uredosporis glo-

bosis vel ellipsoideis, brunneis 16—24 X 15—23 u, episporio castaneo

minute verrucoso 3—4 u crasso,; teleutosporis intermixtis oblongis

utrinque rotundatis apice haud incrassatislaete brunneis 28—32% 15—24,

medio constrictis, episporio minute verrucoso, castaneo, pedicello

hyalino, brevi.

230 P. Hennings.

Chile, Cordillera de la Compana auf Blättern von Thlaspi

glaucophyllum Bon. 1853. — Philippi.

Die Art hat mit P. Drabae Rud. grosse Aehnlichkeit, so be-

. sonders die von der grauen Epidermis bedeckten Sori. Die Teleuto-

sporen sind durch kurzen, farblosen Stiel und starke Einschnürung

aber verschieden.

P. tuberculata Speg. Fungi Arg, p. Il. n. 28.

Brasilia, St. Cathar. Itajahy auf Blättern von Lantana ro-

busta Schauer. Jan. 1886. — E. Ule n. 548.

Argentina, Concepcion del Uruguay. April 1876. — P. G.

Lorentz. Las Palmas in Entre Rios auf Blättern von Lantana lila-

cina. 26. Febr. 1880. — G. Niederlein.

Paraguay pr. Paraguari auf Blättern von Lantana tiliaefolia

Anam. — B. Balansa n. 3544 als Uromyces Lantanae Speg.

Von Schröter sind die vorliegenden Exemplare vielleicht mit

Recht zu P. Lantanae Farlow gestellt worden.

Die Sporen sind, besonders bei den Ule’schen Exemplaren,

meist einzellig.

P. Dichondrae Mont. in Gay Fl. Chil. Vol. VIU. p. 46.

Brasilia, Sao Paulo auf Blättern von Dichondra sericea Sw.

Mai 1887. — E. Ule n. 686.

Argentina, Sierra Achala de Cördoba, am Fusse der Gigantes

auf Blättern von Dichondra repens Forst. Jan. 1881. — G. Hie-

ronymus.

P. insueta Wint. in Hedw. 1887. p. 27.

Brasilia, St. Cathar. auf Blatt von Stigmatophyllum sp.

(n. 66) pr. Rio de Janeiro auf Blättern von St. jatrophifolium A.

Juss., Juli 1887. — E. Ule n. 715.

P. Hydrocotyles (Mont.) Cooke in Grev. IX. p. 14.

Argentina, Chacra de la Merced. Prov. de Cördoba auf Blättern

von Hydrocotyle bonariensis. — G. Hieronymus.

P. gregaria Kunze in Sched. (1827) (= Dasyspora foveolata

(Schwein.) Berk. et C. (1850—1854) — P. Winteri Pazschke in Fung.

eur. n. 3622.)

Surinam, auf Blättern von Xylopia leg. et exs. Weigelt 1827

(in Herb. berol.)

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Xylopia grandiflora

St. Hil. — E. Ule n. 98.

Diese mehrfach beschriebene Art wurde bereits von Kunze in

den von Weigelt in Surinam gesammelten und 1827 herausgegebenen

Pflanzen auf den gedruckten Etiquetten wie nachstehend beschrieben:

„P. maculis fuscescentibus, subrotundis; acervis aggregatis, subannu-

latim positis, bullatis, parvis, irregularibus, hypogenis, epidermide

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 231

rupta cinctis,; sporidiis umbrinis, pedicellis brevibus. Hab. in follis

sempervirentibus plantae Guayanae. Adn. Rarissime acervi sparsi

epigeni observantur. Tomentulum flavum in quibusdam acervis

obvium, est Oidium parasiticum Kz.“

Die schön erhaltenen Exemplare liegen in triplo in der Museums-

Sammlung vor und haben ausserdem weite Verbreitung gefunden,

Die Art muss demnach Puceinia gregaria Kze. heissen, wie bereits

Lagerheim festgestellt hat, da dieser Name etwa 25 Jahre älter ist

als der von Berk. et C. gegebene und die Art muss als zur Gattung

Dasyspora gezogen, künftig als D. gregaria (Kze.) bezeichnet werden,

Was nun von Kunze als Oidium parasiticum bezeichnet wird,

sind meiner Untersuchung nach die bisher unbekannten Uredosporen

dieses interessanten Pilzes. Die Sori sind eigenthümlich gestaltet,

sie erscheinen als fast kreideweisse, rundliche Flecke auf der untern

Blattseite. Es scheint fast, als ob das Mycel auf der Blattfläche

wuchert, die Uredosori nicht, wie später die Teleutosporensori aus der

Epidermis hervorbrechen.

Die verschieden gestalteten und mit einander zusammenfliessenden

Sori der Uredosporen stehen meist in Kreisen von 2-9 mm Durch-

messer. Sie sind flach, unter der Loupe etwas gekörnelt, kreideweiss

oder schwach gelblich und sehen etwa wie Kalkspritzflecke aus, die

mit feinen Rissen durchsetzt sind. In der Mitte einzelner Sori zeigen

sich schwärzliche Streifen oder Pusteln, welches junge, aus der Epi-

dermis hervorbrechende Teleutosporensori sind. Die Uredosporen

sind meist eiförmig oder elliptisch, selten fast kugelig, hyalin oder

schwach gelblich, 18-—-28 X 15—21 « im Durchmesser mit etwas

warzigem, hyalinem Epispor. Nach dem Scheitel zu liegt meist ein

umhöfter Keimporus. Zwischen den entwickelten Sporen finden sich

viel unreife von verschiedener, oft halbmondförmiger Form, sowie

verschieden gestaltete hyaline Hyphen.

P. Pruni Pers. Syn. Fungi pag. 226

Paraguay pr. Paraguari auf Blättern von Persica. — Balansa

n. 3889.

P. Arechavaletae Speg. Arg. pag. IV. n. 57.

Brasilia, Sta. Cathar. pr. Sao Francisco auf Blättern von

Serjania communis Camb. — E. Ule n. 17 u. n. 582; pr. Tubaräo

auf Blättern von Cardiospermum Halicacabum Il.. Jan. 1890, Febr.

1889. — E. Ule n. 1023 u. 1236.

Argentina, Rio alto Paranä, Concepcion del Uruguay u. Puerto

de Brete auf Blättern von Urvillea euryptera — P. G. Lorentz,

Niederlein.

Paraguay, Santa Barbara bei Villa Rica auf Serjania. — Balansa

n. 3529,

re ie a ne 0, an a en De (a Ba Rue u ee, u 1 al a a aa ir un di

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“u

232 P. Hennings.

P. Bougainvilleae Schröt. n. sp.

Soris hypophyllis sparsis, rotundatis 0,4—0,6 mm diametro,

applanatis, epidermide rupta cinctis, atro-ochraceis, teleutosporis

ellipsoideis vel subclavatis 30—50 u plerumque 37-44 X 26-30 u,

utrinque rotundatis, medio septatis constrictisque, episporio 3 u crasso,

levi, laete brunneo, pedicello usque ad 44 u longo 9 u crasso, hyalino.

Argentina, Quebrada de Colanchanga Sierra de Cördoba auf

Blättern von Bougainvillea stipitata. Dec. 1875. — G. Hieronymus;

Sierra de Tucuman, auf B. frondosa, März 1872. — P.G. Lorentz.

Auf einzelnen Blättern fanden sich auf der Unterseite nur wenige

Sori von rundlicher Form am Grunde von der Epidermis umgeben.

Die Sporen haften nur lose an, sind ellipsoidisch oder ellipsoidisch-

keulenförmig, beiderseits abgerundet oder unten wenig verschmälert.

Die Membran ist gleichmässig dick, am kugelig abgerundeten Scheitel

wenig verdickt, lebhaft kastanienbraun. An Blättern und Stengeln

der gleichen Exemplare treten Aecidienpusteln auf, die von Spegazzini

bereits als Aec. Bougainvillea in Fungi Arg. pug. IV. n. 89 be-

schrieben worden sind. Ob aber dies Aecidium zu der Puceinia

gehört, ist nach Schröter vorläufig nicht nachweisbar, aber schr

wohl möglich.

P. Heteropteridis Thüm. in Myc. Univ. n. 839,

Argentina, Concepcion del Uruguay auf Blättern von Heterop-

teris angustifolia Gr. April 1876. — P. Lorentz,

P. Pilocarpi Cooke in Grev. IX (1880) pag. 11.

Brasilia, auf Blättern von Pilocarpus Selloanus. — Sello

n. 4621.

Paraguay pr. Paraguari auf Blättern von Pilocarpus pinnatus.

B. Balansa n. 23.

P. Pithecoctenii Pazschke in Rab. Fung. eur. n. 3715.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Pithecoc-

tenium spec. Mai 1888. — E. Uie n. 34 u. 1477.

P. pampeana Speg. Fungi Argent pug. II. pag. 14.

Argentina, Chacra de la Merced cerca de Cördoba auf Blättern

von Salpichroa rhombifolia. 30. Sept. 1881. — G. Hieronymus. ,

P. Jussiaei Speg. Fungi Argent. pug. IV. n. 62.

Argentina, Concepcion del Uruguay auf Blättern von Jussiaea

lanceolata Camb. März 1875. — P. G. Lorentz,

Es finden sich Aecidien und Puccinia auf gleichen Blättern.

P. Verbesinae Schwein. Syn. Carol, pag. 73 n. 496.

Argentina, Sierra de Tucuman und Concepeion del Uruguay

auf Blättern von Verbesina helianthoides und V. scabra. —

P. Lorentz u. Niederlein.

Von P. Spegazziniana De Toni wohl nicht verschieden.

A ie

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 233

P. Polygoni Pers. Syn. pag. 227.

Argentina, Concepcion del Uruguay auf Blättern von Poly-

gonum acre,. Mai 1870. — P. G. Lorentz.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von P. acre

H. B. K. Nov. 1889. — E. Ule n. 1480.

Die Exemplare aus Brasilien zeigen nur Uredosporen, welche

fast kugelig, elliptisch oder eiförmig, braun mit warzigem Epispor

20—26 X 18—24 u sind.

P. Epilobii D. C. Flor. Franc. VI. pag. 61.

Argentina, Sierra chica de Cördoba auf Blättern von

Oenothera multicaulisR.et. Pav. 25. Nov. 1880. — G. Hieronymus.

Die Uredosori zeigen sich beiderseits auf Blättern, diese sind

rundlich, polsterförmig, rostbraun.

P. Malvacearıum Mont. in Gay Hist. de Chile VIII pag. 43.

Brasilia, St. Cathar. Isola auf Blättern von Malva sp. u. auf

Sida. Sept. 1886. — E. Ule n. 615, 152, 50.

Argentina, Cördoba auf Althaca rosea Cav.— G.Hieronymus.

Sierra de Cördoba u. bei Cördoba auf Malvastrum tricuspidatum.

April 1871. — G. Lorentz; Mai 1877. — G. Hieronymus. Buenos

Ayres auf Malva 1888. — L. Bettfreund.

Paraguay bei Guarapi auf Malvastrum Coromandelinum

Garcke. — B. Balansa.

P. Berberidis Mont. Syll. Crypt. n. 1158.

Argentina, Cördoba auf Blättern von Berberis crassifolia

Lam. Nov. 1874, Nov. 1878. — G. Hieronymus.

P. Malvastri Peck in Bull. Torr. Bot. Club Vol. XII. n. 4. pag. 35.

Argentina, Sierra chica de Cördoba auf Blättern von Mal-

vastrum spicatum Asa Gray. 11. Dec. 1881. — G. Hieronymus.

P. lobata B. et EC. North Am. Funei n. 550.

Brasilia, Rio de Jan. auf Blättern von Sida sp. Juli 1887.

E. Ule n. 711.

Argentina bei San Jose, Prov. de Cördoba auf Abutilon

ramosum. Jan. 1877. — G. Hieronymus.

P. heterospora B. et C. Journ. Lin. Soc. X. pag. 356.

Brasilia, Rio de Jan. auf Blättern von Sida. — E. Ule n. 50.

Argentina, Cördoba auf Abutilon pedunculare Kth.

5. Jan. 1871, auf Sida cordifolia, S. spinosa. — G. Hieronymus.

Sierra chica de Cördoba auf S. urens L. — Galander.

Paraguay pr. Guarapi auf Sida althaeifolia, pr. Paraguari

auf Sida atrosanguinea. — B. Balansa.

P. Adesmiae P. Henn. n. sp.

Soris rami- et foliicolis, capitulis subglobosis vel irreguliter lobatis

dispositis, ochraceis, subpulverulentis; uredosporis subglobosis vel

u 2 Ne A A FE

al N > en. .

234 P. Hennings.

late ellipsoideis 15—24 u, pallide brunneis vel brunneo -fuscis, epi-

sporio c. 3—4 u crasso sublevi; teleutosporis oblongis vel late ellipsoi-

deis utrinque rotundatis, medio 1 septatis constrictisque, fusco brunneis

24—30 X 21-—26 u; episporio atro brunneo 4 «u crasso, verruculoso;

pedicello hyalino, fragili 20 X 4 u.

Argentina, Cuesta de la Puerta de Piedra, Sierra Velasco,

Rioja auf Zweigen von Adesmia trijuga (Papilion.). Jan. 1879,

— Hieronymus u. Niederlein,

Die Art ist von P. Bergii Speg. anscheinend völlig verschieden,

da hier die Sori ganz anders gestaltet und die Teleutosporen

keulenförmig, 60—85 X 18—20 u gross sein sollen. Bei vorliegender

Art tritt der Pilz in lappigen, länglichen oder fast kugeligen bis

1 cm grossen Gallen an den umgebildeten Zweigen auf. Die polster-

förmigen Sori, welche meistens zusammenfliessen, sind fast rostfarbig.

P. Hieronymi P. Henn. n. sp.

Maculis pallidis amphigenis rotundatis, subulatis; soris sparsis,

pulvinato - tuberculatis saepe confluentibus, cinnamomeis; sporis sub-

globosis, ovoideis, ellipsoideis vel clavatis, plerumque unicellularibus

vel medio septatis haud constrictis, apice vix incrassatis, rotundato-

obtusis vel subapiculatis 22—33 X 15— 30 u, laete brunneis, episporio

levi 3-5 u crasso; pedicello hyalino vel subflavescente usque ad 60 u

longo 5-7 u crasso, interdum inflato.

Argentina, Sierra chica de Cördoba, Colanchanga auf Blättern

von Solanum nodiflorum Jacq. Dec. 1881. — G. Hieronymus.

Von P. Physalidis Peck, P. Solani Cooke jedenfalls ver-

schieden. Die zimmetbraunen, etwa 1--1!g mm grossen polster-

förmigen Sori sind fest. — Die Sporen sind meistens einzellig, doch

finden sich zwischen diesen viele zweizellige gemischt. Die Form

derselben ist sehr variabel und wechselt von kugeliger bis lang

keulenförmiger Gestalt.

P. Sisyrinchii Mont. Syll. Crypt. n. 1157.

Uredosoris amphigenis, oblongis, striiformibus confluentibusque,

epidermide pallida, velata tectis; uredosporis subglobosis vel ellipsoi-

deis, saepe acutangulis, pallide flavis 20—30 X 18—24 u episporio

subflavo 3—5 u crasso levi vel punctato, pedicello hyalino usque

ad 15 « longo, fragili; soris teleutosporiferis oblongis striiformibus,

epidermide rupta tectis, dein atris; teleutosporis oblongis vel sub-

clavatis apice obtuso rotundatis vel subpapillatis incrassatis; medio

1 septatis plus minus constrictisque, brunneis vel pallide ochraceis

43—52 X 17—24 u, episporio apice incrassato, brunneo levi, pedicello

subhyalino vel brunneolo 30-50 u, longo ca. 7-9 u crasso.

Ban a u Pe du ie Bi ii Be ln.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 235

Argentina, Sierra Achala de Cördoba, Quebracho del Chorro

in Blättern von Sisyrinchium palmifolium L. 4. Dec. 1870.

— G. Hieronymus.

Chile Rancague in montosis in Sisyrinchium spec. — Bertero

n. 579,

Auf den argentinischen Exemplaren tritt die Uredoform in

bleicheren, von der Epidermis umgebenen, streifenförmigen Pusteln

auf. Diese war bisher nicht bekannt, da sie sich auf den vorliegen-

den ÖOriginal-Exemplaren von Bertero nicht finden. Die Teleuto-

sporen stimmen von beiden Standorten gut überein. *

P. Paranahybae P. Henn. in Hedw. 1895, VI. p.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Ruellia

longifolia Benth. et Hook. März 1888. — E. Ule n. 908.

Argentina, Prov. de las Salinas, bei Bucoya auf Ruellia

spec. 16. Juni 1873. — G. Hieronymus.

P. Flourensiae P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis amphigenis minutis rotundatis applanatis,

pallide brunneis; uredosporis subglobosis vel late ellipsoideis Navis

vel brunneolis 30-—38 X 25-33 u, episporio subbrunneo minute

aculeato; soris teleutosporiferis punctiformibus, pulvinato-rotundatis,

atris; teleutosporis late ellipsoideis interdum subrectangularibus, vel

subglobosis continuisque, laete castaneis medio 1 septatis, paulo

constrictis, apice rotundatis, incrassatis interdum subgibbosis,

30—42 X 28—36 u, episporio levi 3—5 u crasso,; pedicello usque ad

80 u longo ca. 8 u crasso, hyalino.

Argentina, bei Cördoba auf Blättern von Flourensia cam-

pestris Gr. (Solanacea.) Mai 1882. — G. Hieronymus.

Die bräunlichen Uredosori stehen zerstreut auf beiden Seiten

der dicklederigen Blätter, sie sind am Grunde von den Resten der

Epidermis umgeben, abgeflacht; die schwarzen gleichkleinen Sori

der Teleutosporen stehen zerstreut zwischen den ersteren und be-

besitzen kaum !; —1 mm im Durchmesser. Sie sind fast halbkugelig,

etwas runzelig, tief schwarz. Hin und wieder fliessen die Sori zu-

sammen und sind dann mehr abgeflacht.

P. tumidipes Peck in Bull. Torr. Club Vol. XII. n. 4. pag. 34.

t. XLIX, f. 3—8. — var. argentina P. Henn.

Soris uredisporiferis amphigenis, pulvinatis ochraceis sparsis;

uredosporis oblongis ovoideis vel clavatis, fuscobrunneis vel ochraceis

apice paulo incrassato, dense aculeatis 26—35 X 16—22 u; teleuto-

sporis oblongis vel late ellipsoideis, utrinque rotundatis, apice paulo

incrassatis medio paulo constrictis, laete castaneis, episporio levi

4— 5 u crasso, castaneo, 35—50 X 26-32 u, pedicello, hyalino, basi

clavato usque ad 60 « longo, interdum 13 « inflato,

id a

236 P. Hennings.

Argentina pr. Cördoba in Blättern von Lycium argenteum

Hieron. Dec. 1874. — G. Hieronymus.

In Form und Färbung der Uredo- und Teleutosporen stimmen

die Exemplare recht gut mit P. tumidipes Peck überein, doch sind

dieselben bedeutend kleiner.

P. Solani tristis P. Henn. n. sp.

Maculis flavis vel aurantiacis, rotundatis, sparsis; soris hypophyllis,

aggregatis, orbiculariter dispositis, atris; uredosporis subglobosis,

ellipsoideis vel ovoideis, pallide flavis vel fuscescentibus, levibus

10—14 X 9-#13 u, teleutosporis oblongis vel subclavatis, pallide

brunneis vel fuscescentibus 20—34 X 11—13 u apice obtusis vix

incrassatis, medio 1 septatis constrictisque, episporio levi, brunneolo,

pedicello hyalino, brevi.

Brasilia, Serra do Mar, Theresopolis auf Blättern von Solanum

triste Jacq. Dec. 1886. - E. Ule n. 556.

Die Uredo- und Teleutosporen finden sich in gleichen Sori ge-

mischt, letztere sind am Scheitel abgerundet, nach unten oft ver-

schmälert.

P. Metastelmatis P. Henn. n, sp.

Maculis nigricantibus subrotundatis '/y —- 1 cm diametro, soris

minutis, punctiformibus, atris, dense gregariis orbicularibus dispositis

interdum confluentibus; teleutosporis clavatis, oblongis vel turbinatis,

apice obtusis - rotundatis vel applanatis vix vel paulo incras-

satis, pallide flavis vel fuscidulis 23— 30 X 14—18 u, medio vix vel

haud constrictis, episporio levi, fuscidulo, pedicello hyalino vel sub-

fusco usque ad 30 u longo, 3— 4 u crasso.

Brasilia, St. Cathar. auf Blättern von Metastelma odoratum

Decaisne. — E. Ule n. 144.

Die Sori sind von äusserster Kleinheit und treten nur als schwarze

Punkte hervor, die heerdenweise zusammenstehen, oft zusammen-

fliessen. Dieselben sind bald rundlich, bald länglich, flach, am

Grunde von den Resten der Epidermis umgeben. Die miteinander

verschmolzenen Sori sind unregelmässig gewunden und sehen unter

der Loupe fast wie ein reifes Rhytisma aus. Von P. AraujaeLev,,

wofür diese Art in Hedwigia 1892 p. 95 n. 17 bestimmt worden, ist

diese gänzlich durch die Sori verschieden.

P. Ditassae P. Henn n. sp.

Maculis pallidis vel fuscescentibus; soris sparsis singularibus

vel aggregatis, pulvinatis, applanatis, brunneo-atris, duris, com-

pactis ca. 1 mm diametro; teleutosporis ovoideis, oblongis, apice

rotundato-obtusis vel applanatis, hand incrassatis 20—30 X 15—20 u,

medio constrictis, flavo-brunneis, episporio levi pallide cinnamomeo 3 u

crasso, pedicello subhyalino vel brunneolo usque ad 45 4 longo.

Beiträge zur Pilztlora Südamerikas I. 237

Brasilia, St. Cathar. Laguna auf Ditassa sp. März 1889, —

E. Ule n. 1220.

Argentina, Sierra chica de Cördoba auf Blättern von Ditassa

bonariensis Decaisne. April 1871. — P. G. Lorentz.

Die ziemlich festen, harten abgeflachten Sori, welche oft mit

einander zusammenfliessen, stehen einzeln oder zu meheren in blauen

oder bräunlichen Flecken auf der Unterseite der Blätter. Die Teleuto-

sporen sind eiförmig oder länglich, am Scheitel meist stumpf ab-

gerundet, seltener abgeflacht, nicht verdickt und in der Mitte mehr

oder weniger eingeschnürt. Der Stiel ist oben bräunlich, unten hyalin.

P. Gonolobi Rav. in Berk. et Curt. North- Amer. Fungi n. 554.

Brasilia, St. Cathar. Blumenau auf Blättern von Gonolobus

spec. Febr. 1888. — E. Ule n. 905.

Der Pilz erzeugt rundliche gelbe Flecke von meistens I cm

Durchmesser, in denen die Sori heerdenweise zerstreut oder auch

fast kreisförmig stehen. Die Sori sind meist halbkugelig oder polster-

förmig rundlich, ziemlich fest, schwarz, ; -®ı mm im Durchmesser,

punktförmig. Die Sporen sind eiförmig oder oblong, an der Spitze

stumpf abgerundet, nicht verdickt, braun oder dunkelockerfarbig.

In der Mitte sind dieselben wenig zusammengezogen, 21—28X15—22u,

mit lebhaft brauner, glatter, ca. 3 « dicker Membran und bis 80 u

langen farblosen, oft gebogenen, 4-5 u dicken Stielen.

Die Sporen fast sämmtlicher auf Asclepiadaceen vorkommenden

Arten besitzen grosse Aehnlichkeit in der Form mit einander, ebenso

sind dieselben in Grösse und Färbung unwesentlich verschieden. Die

Sori vieler Arten zeichnen sich jedoch durch abweichende Form,

Färbung, Auftreten aus. Vielleicht sind einzelne der vorstehend

beschriebenen Arten nur als Gewohnheitsformen der gleichen Art bei

sorgfältigerer Untersuchung vollständigeren Materials anzusehen und

möglicher Weise ist die Form und das Auftreten der Sori von

der verschiedenartigen Beschaffenheit der Blätter nicht nur hier,

sondern in zahlreichen anderen Fällen abhängig.

P. Araujae Lev. in Ann. Sc. Nat. Ser. III. 3. p. 69.

Brasilia, auf Blättern von Arauja albens G. Don. Mart. pl.

fl. Bras. 978.

Die Sori auf der unteren Seite des Blattes gelbbraun oder ocker-

farben, polsterförmig, oft mehrere zusammenfliessend, sehr fest und

hart, 1-2 mm im Durchmesser. Sporen oblong, keulenförmig, hell-

bräunlich, an der Spitze stumpf abgerundet, nicht verdickt, in der

Mitte nicht oder sehr schwach zusammengezogen, 26—35 X 13—15 u,

mit dünner, gelbbräunlicher, glatter Membran und farblosem 30-40 [Z

langem, 5—6 u verdicktem Stiel.

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238 P, Hennings.

P. Rouliniae P. Henn n. sp.

Soris hypophyllis sparsis, vel confluentibus, rotundatis pulvinatis

applanatis cinnamomeis, ca. !-——-'; mm diametro; teleutosporis

clavatis, oblongis vel subturbinatis, apice obtusis vix incrassatis,

pallide flavis, paulo vel haud constrictis, 25—33X13—15 u, epi-

sporio levi subflavo, pedicello 15—20 X 3 u, subflavescenti interdum

subclavato.

Argentina, Prov. de Salta, Passaje del Rio Juramento auf

Blättern von Roulinia convolvulacea Gr. Febr. 1873. —

G. Hieronymus et Lorentz.

Die Sori treten einzeln oder zu mehreren zusammenfliessend auf

der Blattunterseite auf. Dieselben sind zimmtfarbig, schr klein, flach,

polsterförmig und haben mit denen von P. Gonolobi Achnlichkeit.

P. Spermacoces B. et C. North. Am. Fungi n. 518.

Brasilia, Rio de Jan. auf Blättern von Hemidiodia ocimi-

folia Schum. u. Diodia sp. Juni 1887. — E. Ule n. 694 u. 600.

P. Niederleinii P. Henn. n. sp.

Soris in maculis pallidis rotundatis, hypophyllis, orbiculariter

dispositis, punctiformibus, hemisphaerico -pulvinatis cinnamomeis;

teleutosporis ellipsoideis, ovoideis vel turbinatis, flavo-brunneis

medio 1 septatis vix constrictisque apice plerumque late applanatis,

incrassatis, 16—30 X 14—22 u episporio levi 3—4 u crasso, pedicello

hyalino vel fuscidulo, flexuoso usque ad 60 u elongato, 4—5 u crasso.

Argentina, Missiones Esquina del Rio alto Parana auf Blättern

vonManettia leianthiflora Gr. 29. März 1883. — ]J. Niederlein.

Die fast halbkugeligen, punktförmigen, zimmtbraunen Sori

stehen sehr zierlich in meist concentrischen Kreisen, innerhalb

bleicher oder gelblicher Flecke.

P. elegans Schröt. n. sp.

Soris ramos, caules, folia tegentibus, deformantibus, destruenti-

busque, raro singularibus plerumque confluentibus epidermide pallida

rupta cinctis, cinnamomeo-ochraceis, pulverulentis; teleutosporis late

ellipsoideis vel oblongis, brunneis, apice rotundato obtusis, subin-

crassatis, interdum gibbosis medio 1 septatis, paulo vel haud con-

stricetis, 30-36 X 20—24 u; cpisporio 3—4!g u crasso pallide

castaneo, verrucoso, pedicello brevi, hyalina, fragili usge ad 13 «

longo, 41a —5!/3 u crasso.

Argentina, Chacrarita de los Padres cerca de Catamarca auf

Zweigen und Stengeln von Tecoma stansL. 21.—24. Nov. 1872.

— G. Hieronymus u. Lorentz.

Der Pilz befällt die jungen Zweigspitzen und verkrümmt diese

sowie die jungen Blätter, hexenbesenartige Bildungen hervorrufend.

Die Sori sind anfangs pustelförmig, brechen dann auf und fliessen

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Beiträge zur Pilzlora Südamerikas 1. 239

zusammen, so dass die jungen Zweige ringsherum von den zimmt-

braunen Sporenmassen umgeben sind. Zwischen diesen stehen die

Reste der bleichen, häutigen Epidermis. Von P. ornata Harkn., die

auf Tecoma stans in Californien vorkommt, ist diese Art völlig

verschieden, ebenso wie von P. Bignoniacearum Speg.

P. tinctoria Speg. Fungi Guarant. I. n. 119.

Argentina, Prov. de Salta, Nevado del Castillo und Sierra

de Tucuman auf Blättern von Eupatorium prasiifolium Gr.

März 1872—1873. — Hieronymus u. Lorentz; Concepcion del Uru-

guay auf Eupatorium sp. n. 1770. März 1879. — P. G. Lorentz.

P. Lorentzii P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis sparsis hypophyllis, punctiformibus minutis,

ochraceis; uredosporis globosis ovoideis vel ellipsoideis, flavo-brunneis,

22—28 X 21—24 u, episporio brunneo 3—4 u crasso dense aculeato-

asperato; soris teleutosporiferis sparsis, minutis, punctiformibus,

hypophyllis, atris; teleutosporis elongato clavatis vel oblongis

brunneis, apice rotundatis paulo incrassatis, medio constrictis, epi-

sporio castaneo 4 u crasso, levi, pedicello hyalino usque ad 150 u

longo, inflato 8S—11 «u incrassato.

Argentina, Entre Rios auf Blättern von Vernonia Lorentzii,

Hieron. Febr. 1878. — P. G. Lorentz; Colonia Sanpacho. Prov.

de Cördobaauf Vernonia mollissima Don. März 1882. — Galander.

Brasilia, Petropolis auf Blättern von Vernonia scorpioides

Pers. Juli 1882. — ]J. Ball.

St. Cathar., pr. Tubaräo auf Blättern von Vernonia sp. Octob.

1890. — E. Ule n. 1414, 224.

Auf der Ule’schen Pflanze finde ich nur Uredoform, die jedoch

mit den argentinischen Exemplaren gut übereinstimmt, nur dass hier

die Sporen meist eiförmig und verhältnissmässig etwas grösser sind.

Von P. Vernoniae Cooke u. P. Heliopsidis Schwein. ist die Art

verschieden.

P. Conyzae P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis hypophyllis, hemisphaericis, diutius tectis,

dein pallide ochraceis singularibus gregariis, uredosporis subglobosis

ovoideis vel ellipsoideis, flavo-brunneis, aculeatis 23—26 X 15—18 u;

soris teleutosporiferis in maculis fuscis, gregariis vel solitariis atro-

fuscis, pulvinatis; teleutosporis oblongis, clavatis vel turbinatis sacpe

acutangulis, fusco-brunneis, apice valde incrassatis, obtusis, inter-

dum applanatis vel oblique subapiculatis, medio constrietis, 40-50

x 25-30 u, episporio levi, pedicello brevi, hyalino.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Conyza

triplinervia. April 1888. — E. Ule n. 900.

240 P. Hennings.

Die Uredosori finden sich heerdenweise zerstreut auf der Unter-

seite der Blätter, diese sind lange geschlossen, fast halbkugelig, dann

hell ockerfarben. Die Teleutosporenhäufchen sind gewöhnlich in

unregelmässigen dunklen Flecken stehend. Ihre Sporen sind sehr

unregelmässig und verschieden gestaltet, meist keulenförmig, an der

Spitze ziemlich stark verdickt, mitunter mit fast abgesetzter Warze,

meistens aber stumpf, rundlich oder abgeflacht.

P. Piptocarphae P. Henn. n. sp.

ä Uredosoris hypophyllis sparsis vel subgregariis, pulvinatis ochra-

ceis, uredosporis subglobosis, ovoideis vel ellipsoideis, fuscis, dense

aculeatis 26—32X23—28 u, Soris teleutosporiferis sparsis, hypophyllis,

pulvinatis, minutis, atris; teleutosporis clavatis vel oblongis flavo-

fusceidulis, levibus 30 —44 X 17-—26 u, apice rotundatis, subincrassatis,

medio constrictis; episporio fuscidulo vel brunneo, pedicello hyalino,

brevi.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Pipto-

carpha oblonga Gardn. u. P. spec. Dec. 1888. — E.Ule n. 1317

n. 1198.

Die Uredosori stehen meist einzeln zerstreut, seltener heerden-

weise zusammen auf der Unterseite der Blätter, dieselben sind bei

vorliegenden Exemplaren von verschiedenartigen Schmarotzerpilzen

durchsetzt. Auf n. 1198 findet sich nur Uredo.

P. Pterocaulonis P. Henn. n. sp.

Soris amphigenis, gregariis vel sparsis, pulvinatis atrofuscis,

uredosporis subglobosis, ovoideis vel subellipsoideis, laete brunneis

20--33 X 20—30 u, episporio castaneo, aculeato 3 u crasso; teleuto-

sporis clavatis interdum oblongis, 40—55 X 18— 28 u apice rotundato-

obtusis vel subpapillatis usque ad 5—8 4, incrassatis, medio

constrictis, episporio levi castaneo, pedicello hyalino vel subbrunneolo

plus minus elongato 6—9 u crasso.

Brasilia, St. Cathar. Blumenau auf Blättern von Pterocaulon

spicatum DC. und Pt. virgatum. Juli u. März 1888. — E. Ule

n. 907, 651.

Auf dem Exemplar n. 651 finden sich ausschliesslich Uredosporen,

während auf n. 907 dieselben mit Teleutosporen in gleichen Sori

vorkommen. Die polsterförmigen dunklen Sori finden sich sowohl

auf der runzeligen Oberseite der Blätter, einzeln oder heerdenweise,

oft zusammenfliessend, wie auf der filzigen Unterseite, hier meist

mehr einzeln und zerstreut stehend. Die Uredosporen sind lebhaft

braun gefärbt mit stacheliger, hell kastanienfarbiger Membran. Die

Teleutosporen sind meist keulenförmig oder oblong und an der

meist stumpf abgerundeten Spitze stark verdickt, oder auch ist die

Spitze mit brauner Warze versehen.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 241

P. Pereziae P. Henn n. sp.

Maculis flavis rotundatis; soris hypophyllis sparsis vel aggregatis

pulvinatis, cinnamomeis, epidermide rupta cinctis ca. '/; mm diametro;

teleutosporis ovoideis vel ellipsoideis, apice rotundato-obtusis non

incrassatis, medio paulo constrictis, brunneis 28—38 X 18—28 u,

episporio castaneo, levi, ca. 3 u crasso, pedicello hyalino, fragili plus

minus elongato.

Argentina, Cienega Sierra de Tucuman auf Blättern von Perezia

carduncelloides Gr. (Composit). März 1872. — P. G. Lorentz.

Die kleinen polsterförmigen, hell zimmtbraunen Sori stehen meist

zerstreut auf der Unterseite der Blätter, seltener gehäuft zusammen.

P. Spegazzinii De Toni in Sacc. Syll. VII pag. 704 = P.

australis Speg.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Mikania scandens W.

Juli 1888. — E. Ule n. 899.

Argentina, auf Mikania scandens W. — G. Hieronymus.

Paraguay, Villa Azara. März 1883. — Niederlein.

P. Baccharidis triplinervis P. Henn. n. sp.

Maculis epiphyllis, brunneis vel fuscis, rotundatis, sparsis ca. 1 mm

diametro, interdum confluentibus:; soris teleutosporiferis hypophyllis,

minutis, sparsis, atris, teleutosporis ovoideis vel elongatis apice in-

crassatis rotundatis vel subapiculatis, medio septatis vix constrictis

25—40 X 15—26 a, fusco brunneis, pedicello hyalino usque ad 60 u

longo 4-5 u crasso.

Brasilia, Blumenau auf Blättern von Baccharis triplinervis. —

E. Ule n. 96 u. 1449.

P. Baccharidis cassinoidis P. Henn. n. sp.

Maculis fuscis irregularibus; soris subgregariis vel sparsis hypo-

phyllis, ochraceis, diutius tectis; uredosporis subglobosis ovoideis

vel late ellipsoideis, subhyalinis flavescentibus vel fuscescentibus,

verrucosis 28—40 X 25—35 u; teleutosporis plerumque intermixtis

elongato-clavatis vel subfusoideis, apice obtuso rotundatis haud

incrassatis, medio constrictis, episporio tenui, flavidulo vel brunneolo,

60-—75 X 23-27 u, pedicello hyalino 30—60 u longo 5—7 u crasso.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Baccharis

cassinoides. — E. Ule n. 132.

P. Baccharidis cylindricae P. Henn.

Maculis flavis irregularibus; soris teleutosporiferis sparsis vel

agkregatis caulicolis, primo tectis dein epidermide inflata cinctis,

pulvinato-hemisphaericis, cinnamomeis, subpulverulentis usque ad

1 mm diametro; teleutosporis oblongis apice obtuse -incrassatis, flavo

brunneis; ad septum valde constrictis 45--60 X 22-28, episporio

brunneo levi 3 u crasso, pedicello hyalino, flexuoso usque ad 80 „u longo.

Hedwigia Ba. XXXV, 1890, 16

RUE ve

242 P. Hennings.

Argentina, Prov. de Buenos Ayres, auf breitgeflügelten Stengeln

von Baccharis cylindrica DC. April 1881. — P. G. Lorentz,

P. cfr. evadens Harkn. New Calif. Fungi pag. 14.

Brasilia, St. Cathar. p. Blumenau auf Blättern von Baccharis

dracunculifolia DC. — E. Ule 910 u. 208, Sao Francisco auf Blättern

von Baccharis calvescens DC. — E. Ule n. 1448.

An Stengeln treten Aecidien, auf Blättern Uredosori auf.

P. baccharidicola P. Henn. n. sp.

Maculis flavescentibus irregularibus vel rotundatis, soris sparsis

vel aggregatis, pulvinatis, ochraceis subpulverulentis; uredosporis late

ellipsoideis vel ovoideis, pallide brunneis 22——-28 X 19—22 u, dense

verrucosis; teleutosporis intermixtis, subfusoideis elongatis 60--75 X

15—22 u, apice papillatis, medio leniter constrictis, episporio tenui,

levi, pallide brunneo apice non incrassato; pedicello hyalino 30 u

longo, tenui.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Baccharis spec. —

E. Ule n. 732.

Die Sori sind äusserlich denen von P. Baccharidis Diet. et Holw.

ähnlich, durch die Sporen jedoch genugsam verschieden. Die Uredo-

sporen sind mit kugelförmigen, hyalinen Warzen besetzt, auf dem

Scheitel der Teleutosporen ist eine spitze oder oft abgerundete Papille

vorhanden.

P. Bomareae P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis saepe in maculis fuscisehypophyllis pulvinatis

diutius tectis, oblongis vel rotundatis ochraceis; uredosporis subglobosis

vel ellipsoideis, flavis vel citrinis 20—25 X 16—23 u, intus punctatis,

episporio luteo brunneo punctato-verrucoso 5-6 u crasso; soris

teleutosporiferis amphigenis, atris, pulvinatis; teleutosporis sub-

rectangularibus vel late ellipsoideis, flavis vel citrinis, apice obtusis

vel applanatis, raro subapiculatis, rufobrunneis, medio 1 septatis

constrictis 26—35 X 20—26 u, episporio brunnco vel rufobrunneo,

3 u crasso, pedicello brevi rufobrunneo.

Brasilia, auf Blättern von Bomarea edulis. Dec. 1883. —

E. Ule.n. 180.

Die Art wurde von Herrn Pazschke in Hedwigia 1892 pag. 95

zu Puccinia Allii (DC.) Sacc. gestellt. Mit derselben hat sie zwar

grosse Achnlichkeit, aber ist sowohl durch die Sori wie besonders

durch die Form und Färbung der Teleutosporen verschieden.

P. Gynotrichis P. Henn. n. p.

Soris amphigenis, minutis punctiformibus atris, pulvinatis oblongis

vel elongatis confluentibusque; teleutosporis oblongis vel subclavatis,

laete brunneis medio septatis constrictisque, apice obtusiusculis, in-

crassatis plus minus papillatis 23—45 X 15-—18, episporio subcastaneo,

levi; pedicello brunneolo, subclavato, persistente 30—50X 6,8 u.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 243

Argentina, Siambon, Sierra de Tucuman auf Blättern von

Gynothrix latifolia Schult. März 1872. — P. G. Lorentz,

Die Blätter sind meist auf der Oberseite, weniger auf der Unter-

seite mit zahllosen sehr kleinen, länglichen tiefschwarzen Sori bedeckt.

Die Spitze der Spore ist fast warzenförmig abgesetzt, bräunlich, bis

9 u lang, stumpflich abgerundet. Der Stiel ist oft etwas keulen-

förmig aufgeblasen, oben bräunlich, unten heller, fast farblos.

P. Stipae Arthur Prelim. List of Jowa Uromyces pag. 160 n. 60.

Argentina, Buenos Ayres, Prärien auf Blättern von Stipa

manicata Desv. 5. Dec. 1875. — B. Balansa.

Die Teleutosporen sind oblong oder verlängert eiförmig, in der

Mitte zusammengezogen, am Scheitel verdickt, stumpf oder zu-

gespitzt, braun, 40- 60 X 25—30 u, der Stiel ist ca. &0 u lang,

5—-8 u dick, fast farblos.

P. arıstidicola P. Henn. n. sp.

Soris foliicolis oblongis vel striiformibus, atris epidermide rupta

einctis,; uredosporis subglobosis vel late ellipsoideis, brunneis, levi-

bus 24-30 X 22—25 u, episporio 4,6 u crasso, levi; teleutosporis

intermixtis late ellipsoideis, oblongis vel subclavatis, atrobrunneis

vel castaneis, utrinque rotundatis apice incrassatis, medio leniter

constrictis, 23—40 X 18— 28 u, episporio atrocastaneo, levi 4-6 u

crasso, pedicello usque ad 120 u longo 6—8 u crasso, subhyalino

apice brunneolo.

Argentina, bei Cördoba auf Blättern von Aristida spec.

18. März 1881. — C. Galander.

Die Art ist von P. Aristidae Trac. jedenfalls verschieden, be-

sonders durch die glatten Uredosporen, sowie durch die dunkel-

braunen, an der Spitze nicht verdickten Teleutosporen. Die Sori

treten in streifenförmigen, schwarzen, erhabenen Polstern auf der

Unterseite der Blätter auf und sind am Grunde von der längs-

aufgerissenen Epidermis umgeben.

P. abnormis P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis oblongis, striiformibus, confluentibus

diutius tectis, dein erumpentibus epidermide rupta cinctis,

ochraceis vel atrobrunneis; uredosporis subglobosis vel ellipsoi-

deis, fuscis 22—27 X 16—23 u, episporio atrofusco dense acu-

leato; soris teleutosporiferis amphigenis, oblongis, striiformibus,

primo tectis dein longitudinaliter erumpentibus, atrobrunneis;

teleutosporis valde irregularibus _ diversisque lanceolatis, ob-

longis, clavatis vel subovoideis, saepe apice usque ad medium

bipartitis furcatis, mox longitudinaliter mox transverse vel oblique

septatis vix constrictisque, interdum continuis, apice rotundato-

16*

244 P. Hennings.

obtusis, subapplanatis vel subapiculatis, episporio fusco-olivaceo

2—-3 u crasso, levi, pedicello hyalino usque ad 65 u longo 5-6 u

crasso, persistente.

Argentina, Rio Tercero, Prov. de Cördoba auf Blättern einer

Graminee (Gynothrix sp.). 31. März 1882. — C. Galander.

Es ist dies eine durch die verschiedene Gestalt der Teleuto-

sporen höchst merkwürdige Art. Dieselben sind häufig von der

Spitze bis zur Mitte und darüber hinaus gabelig zweitheilig, ohne

Querscheidewand, so dass es aussieht, als ob zwei Sporen auf einem

Stiel stehen, die an der Basis miteinander verwachsen sind. Die

nicht gegabelten Sporen sind sehr oft durch eine von der Spitze

bis zur Basis führende Längsscheidewand getheilt, an der Spitze

abgeflacht und mitunter etwas eingebuchtet. Andere Sporen sind

mit mehr oder weniger schiefer Querscheidewand versehen, wenig

eingeschnürt. Hin und wieder finden sich auch unseptirte Sporen.

Die Spitze der Sporen ist bald stumpf abgerundet, bald breit, bald

zugespitzt, mitunter ausgebuchtet, oder an der Längsscheidewand

mehr oder weniger eingeschnitten. Die Länge und Breite der

Sporen ist sehr verschieden und von der Form abhängig, 35 X 15,

30 X 14, 24 X 23, 21 X 19 u und differirt ca. 21—35 X 15—24 u.

P. subdiorchidioides P. Henn. n. sp.

Uredosporis amphigenis, striiformibus, epidermide inflata, pallida

velatis, ochraceis; uredosporis subglobosis vel ellipsoideis, brunneis

vel fuscidulis 18—23 X 15—21 u, episporio levi brunneo, tenui;

soris teleutosporiferis plerumque hypophyllis interdum epiphyllis,

striiformibus subconfluentibusque, atris; teleutosporis oblongis vel

clavatis, brunneo-fuscidulis 30—38 X 15—18 u levibus, apice obtuso

rotundato, subcrenato vel apiculato subpapillatoque, plerumque

oblique longitudinaliter septatis vel continuis vel horizontaliter sep-

tatis plus minus constrictis et loculis subglobosis vel subellipsoideis,

pedicello brevi vel plus minus elongato, subhyalino.

Argentina, Rio Lujan bei Buenos Ayres auf Blättern von Pani-

cum Crus galli. April 1883. — Bettfreund.

Die Art steht der P. abnormis nahe, ist aber durch die ange-

gebenen Merkmale verschieden.

P. Poarum Nielsen in Botan. Tidskr. III., II. 26,

Brasilia, St. Cathar., Tubaräo u. Jtajahy auf Poa annua L. —

E. Ule n. 1032: u.: 502.

P. Sorghi Schwein. North. Am. Fungi pag. 295 u. 2910.

Brasilia, St. Cathar. auf Zea Mays. — E. Ule n. 315.

Argentina, Sierra de Tucuman auf Andropogon sp. März

1872. — P. G. Lorentz.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 245

Phragmidium l.ink.

Phr. subcorticium (Schrank) Wint. Pilze L. pag. 228.

Brasilia, pr. Blumenau auf Blättern von Rosa spec. cult. —

E. Ule n. 532.

Cronartium Fries.

Cr. verruciforme P. Henn. n. sp.

Columellis hypophyllis dense gregariis, verruciformibus sub-

hemisphaericis, pulvinatis applanatis brunneo -ochraceis, 250—350 X

250-300 «u; teleutosporis plerumque oblongis acutangulis, interdum

ellipsoideis ovoideis vel clavatis, pallide flavis intus granulatis

18-35 50x 12-20 u, episporio 3--5 u crasso subhyalino.

Argentina, Sierra chica de Cördoba zwischen dem Pan de

Azucar et Colanchanga auf Blättern von Sida macrodon var. inter-

media St. Hil. Novbr. 1881. — G. Hieronymus.

Eine von allen beschriebenen Arten abweichende Species, die

auf der Unterseite der Blätter heerdenweise in braunen, fast halb-

kugeligen Warzen auftritt. Die Sporen sind bei dieser Art nicht

so fest mit einander verbunden wie dies bei anderen Arten der

Fall ist, sondern lösen sich durch Druck des Deckglases ziemlich

leicht von einander.

Ravenelia Berk.

R. Schröteriana P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis hypophyllis sparsis, flavis vel ochraceis

epidermide rupta cinctis; uredosporis subglobosis vel late ellipsoideis,

intus interdum punctulatis, brunneis 18-—-25 X 16—22 «, paraphysibus

clavatis vel capituliformibus, parte inferiore subhyalinis, parte superiore

rufo-brunneis 30—45 X 15 21 u. Soris teleutosporiferis hypophyllis

sparsis, rufo-brunneis, capitulis aggregatis 90 -120 u diametro, sub-

globosis e 20 et pluribus cellulis compositis, brunneis vel castaneis,

asperatis, aculeis-obtusis, brunneolis 3-4 %X2—3 u; cystideis sub-

globosis vel late ellipsoideis hyalinis; sporis subcuboideis pentagonis

vel hexagonis ca. 20—30 X 18—28 u.

Argentina, zwischen Salta und Campo santo auf Blättern

von Indigofera sp. April 1873. — Lorentz u. Hieronymus.

Die Sori treten nur sehr spärlich auf der Unterseite der Blätter

auf. Die mit kurzen Stacheln besetzten Köpfchen der Teleutosporen

stehen in den Sori oft sehr gehäuft und sind glänzend rothbraun.

Ein Stiel wurde nicht an den Köpfchen beobachtet, höchst wahr-

scheinlich ist dieser abgebrochen, ebenso waren die Cysten meistens

schon abgefallen.

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246 P. Hennings.

R. Mimosae sensitivae P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis amphigenis, sparsis vel gregariis dein con-

fluentibus explanatisque ochraceis, uredosporis subglobosis, ellipsoideis

vel ovoideis flavo-brunneis dense aculeatis 1521 X 14-—18 u, para-

physibus clavatis, subhyalinis 25—40 X 8-10 u; soris teleutospori-

feris intermixtis, irregularibus atrorufis, capitulis gregariis 70—85 u

diametro subglobosis asperatis, aculeis subsubulatis obtusis, hyalino-

bruneolis 5—6 u longis ca. 3 4 crassis; cystideis hyalinis subglobosis

ca. 15-18 « diametro; sporis (ca. 20, 8 ad marginem) subcuneatis

vel pentagonis, vertice incrassatis, brunneis vel subeinnamomeis

2030 u diametro; pedicellis haud conspicuis.

Argentina, Tucuman auf Blättern von Mimosa sensitiva L.

— P; G. Lofentz,

Die Uredosori treten mit den Teleutosoris auf beiden Seiten der

Blätter auf. Erstere sind anfangs am Grunde von der aufgerissenen

Epidermis umgeben, fliessen später meistens zusammen und treten

dann die Teleutosporenköpfchen heerdenweise in denselben auf.

Letztere sind glänzend dunkelrothbraun, kugelig, Ein Stiel wurde

nicht bemerkt.

R. Cohniana P. Henn. n. sp.

Soris uredosporiferis hypophyllis vel ramicolis sparsis, oblongis

vel rotundatis primo epidermide tectis, dein ochraceis; uredosporis

oblongis vel ellipsoideis, levibus, flavis vel brunneis, 12—17X10-—14 u,

soris teleutosporiferis hypophyllis, sparsis, minutis, punctiformibus,

atris, epidermide fissa cinctis; capitulis subglobosis vel subhemi-

sphaericis, brunneis, 40,—50X35—40 u 5-—-6 sporis, asperatis, aculeis

brunneolis, subsubulatis 4—5 u longis, 3 u crassis; sporis subtrian-

gularibus vel oblongis 16—22 X 13—15 u; cystideis 5-6 subglobosis

vel ellipsoideis 15—17 u diametro, hyalinis.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Caesalpinia spec. Juli 1887. —

E. Ule n. 703.

Die Uredosori treten theils an den jungen Zweigen, wo sie in

länglichen oder rundlichen Pustein aus der Rinde hervorbrechen,

theils auf der Unterseite der Blätter hervor; an letzteren Stellen mit

den Teleutosporensori. Diese finden sich sehr vereinzelt und zer-

streut, sie sind am Grunde von der aufgerissenen Epidermis umgeben,

dunkelbraun oder schwärzlich. Die Köpfchen bestehen nur aus

wenigen, meist 5-, seltener 6-randständigen Zellen, deren jede eine

kugelige oder breit elliptische farblose Cyste trägt. Ein Stiel wurde

nicht beobachtet.

R. microcystis Pazschke in Hedw 1894 pag. 65?

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von Cassia sp.

— E. Ule n. 1009.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 247

Es finden sich meist nur völlig verstaubte Sori, die zerstreut,

punktförmig auf der Unterseite der Blätter als schwarze Punkte auf-

treten. Neben keulenförmigen Paraphysen, die gelblich 30—50 X

14—17 u gross sind, zeigen sich Uredosporen von eiförmiger oder

elliptischer Form, braun 15—18 X 11—15 u, die eine stachelige

Membran besitzen. Teleutosporen sah ich sehr undeutlich, dieselben

besitzen ca. 40 a im Durchmesser und sind kugelig, glatt. — Der

Pilz tritt auf gleicher Cassia auf wie Rav. microcystis. Vorläufig

möge derselbe, obwohl er verschieden erscheint, hierher gestellt

werden, bis besseres Material vorliegt.

Puceiniosira Lagerh.

P. pallidula (Speg.) P. Henn. — P. Triumfettae Lag.

Paraguay pr. Guarapi auf Blättern von Triumfetta. Juli 1883.

— B. Balansa 3886.

Brasilia, Säo Francisco auf Blättern von Triumfetta astilboidis.

— E. Ule in Rab. Pazschke Fung. eur. n. 3823.

Dieser Pilz wurde von Spegazzini in Fungi guar. p. I p. 62 als

Coleosporium? pallidulum beschrieben. Lagerheim, der diese Art in

Ecuador bei Puente de Aninbo Sept. 1891 auf Blättern derselben

Triumfetta sammelte, stellte ein neues Genus Pucciniosira auf und

nannte die Art P. Triumfettae. Da mir die Aehnlichkeit der Blätter

sowie die der auf diesen vorhandenen Sori auffiel, ergab die angestellte

Untersuchung, dass beide Pilze zweifellos identisch sind, und ist die

Art demnach wie oben zu benennen.

Uredo Pers.

U. Tessariae Speg. Fung. Arg pug. IV. n. 85.

Argentina, Vega del Jaguel, Cordillera de la Rioja auf Blättern

von Tessaria absinthioidis DC. März 1879. — G. Hieronymus.

U. malvicola Speg. Fung. guar. I. n. 151.

Paraguay pr. Paraguari auf Blättern von Sida sp. — Balansa.

U. Helianthi Schwein. Syn Am. bor. p. 291.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Verbesina sp.

Juli 1887. — E. Ule n. 716.

U. Sebastianae Wint. in Hedw. 1887 p. 12.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Sebastiana

sp. Octob. 1888. — E. Ule n. 1494.

U. Oxalidis Lev. in Ann. Sc. Nat. 1841 p. 240.

Brasilia, Itajahy auf Blättern von Oxalis corymbosa. — E. Ule

n. 598.

U. Cannae Wint. Fung. eur. n. 3129.

Brasilia, St. Cathar. Tubaräo auf Blättern von Canna indica

Sept. 1889. — E. Ule n. 1339.

De a du lin 2 null Zuge Zen ea oe

248 P. Hennings.

U. paraguayensis Speg. Fung. guar. II. p. 38.

Argentina, Cördoba auf Blättern von Lippia lycioides Steud.

28. Sept. 1877. — G. Hieronymus,

U. Cupheae P. Henn. Hedw. 1895. p. 99.

Brasilia, Piauhy auf Blättern von Cuphea micrantha

H.B.K. — Gardner n. 2167.

U. Celtidis Pazschke in Fung. eur. n. 3734,

Brasilia, St. Cathar. Tubärao auf Blättern von Celtis. sp. —

April 1889, — E. Ule n. 1007.

U. Fici Cast. Cat. pl. Mars. II. p. 87.

Brasilia, auf Blatt von Ficus spec. — E. Ule n. 554.

U. Janiphae Wint. in Grev. XV. p. 86.

Brasilia, St. Cathar, Säo Francisco auf Blättern von Mani-

hot sp. — E. Ule n. 362.

U. Heterantherae P. Henn. n. sp.

Maculis amphigenis, sparsis gregariisque, minutis rotundatis;

soris sparsis vel aggregatis, minutis punctiformibus, rotundatis, diu

epidermide tectis, dein ruptis brunneis vix '; mm diametro; sporis

subglobosis, ovoideis, vel ellipsoideis, 18— 25X 16 24 u, brunneis,

episporio tenui, levi.

Brasilia, St. Cathar. p. Tubaräo in Blättern von Heteran-

thera reniformis. — E, Ule 895, 1006.

Derselbe Pilz findet sich in Rabenh.-Wint. Fungi eur. n. 3829

als Uredo zu Uromyees Pontederiae Speg. angeblich auf Pontederia

spec. von Tubaräo herausgegeben und wurde von E. Ule Febr. 1886

daselbst gesammelt.

Von U. Pontederiae Speg. ist die Art jedoch wesentlich ver-

schieden, wenn auch in mancher Beziehung ähnlich und die Bezeich-

nung ist jedenfalls durch irrige Bestimmung der Nährpflanze, welche

gleichfalls Heteranthera reniformis ist, verursacht worden.

Auf Blättern von Pontederia erzeugt der Spegazzini'sche Pilz

grosse dunkelviolette Flecke, in denen die langgestreckten, 1-3 mm

x0,5—1 u grossen aufgeblasenen Sori stehen, welche von denen

obiger Art wesentlich verschieden sind. Die Sporen beider Arten

haben grosse Achnlichkeit miteinander. Es scheint mir jedoch rich-

tiger, zumal da von obiger Art nur Uredosporen sich finden, den

Pilz als besondere Art aufzustellen.

Uredo Phyllanthi P. Henn. n. sp.

Maculis nullis vel punctiformibus, fuscis, gregariis soris hypo-

1 phyllis sparsis vel gregariis minutis, punctiformibus, pulvinato-bullatis,

; epidermide pallide fusca tectis vel cinctis, sporis subglobosis, ovoideis

vel oblongis saepe acutangulis, intus flavo-brunneis 15—30 X 13—23 u,

episporio levi 2—-3 u crasso,

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 249

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Phyllanthus sp.

Juli 1887. — E. Ule n. 69.

Die sehr kleinen punktförmigen, mit aufgeblasener Epidermis

bedeckten Sori, die auf der Unterseite der Blätter heerdenweise

zerstreut stehen, sind oft reichlich mit Darluca Filum besetzt.

U. Siphocampyli P. Henn. n. sp.

Soris amphigenis dense gregariis confluentibusque folium omnino

occupantibus, cinnamomeis, pulverulentis; sporis subglobosis ovoideis

vel ellipsoideis, laete brunneis 23—28 X 21-—26 u, episporio castaneo,

tenui, sublevi vel minute verruculoso.

Argentina, Serrania de la Cuesta del Garabatal, Sierra de

Tucuman, auf Blättern von Siphocampylos spec. (Lobeliacea)

Jan. 1874. — G. Hieronymus u. P. G. Lorentz.

Das Blatt ist auf beiden Seiten völlig mit den bereits ineinander-

geflossenen Sori, aus dem hin und wieder Reste der aufgerissenen

blassen Epidermis hervorragen, bedeckt und durch diese gleichmässig

zimmtbraun gefärbt.

U. Ditassae P. Henn. n. sp.

Soris hypophyllis rarius epiphyllis, gregariis, folium infra totum

obtegentibus, minutis, punctiformibus, hemisphaericis, pallide ochra-

ceis, diutius tectis, vertice erumpentibus, epidermide velata cinctis,

subcupuliformibus; sporis ovoideis vel ellipsoideis, subbrunneis vel

fuscis 20-28, vel 35 X 15—32 «, episporio tenui, brunneolo, 1'/,—2 u

crasso, levi vel minute verruculoso.

Argentina, Rosario und Cördoba auf Blättern von Ditassa

campestris L. 27. Nov. 1877. — G. Hieronymus.

Die schr kleinen Blätter sind auf der Unterseite dicht mit den

punktförmigen, fast kugeligen oder halbkugeligen, am Scheitel sich

durch eine Ritze öffnenden Sori bedeckt, die unter der Loupe fast

wie Mohnsamen aussehen.

U. Adenocalymmatis P. Henn. n. sp.

Maculis nullis, soris hypophyllis sparsis gregariisque minutis,

rotundato-pulvinatis, pallide ochraceis, pulverulentis; sporis sub-

globosis, ovoideis, ellipsoideis vel piriformibus saepe acutangulis, sub-

hyalinis vel pallide flavis fuscidulisque, intus granulato-punctatis

15—24 X13—18 u, episporio dilute brunneolo vel fuscidulo, tenui,

granulato - verrucoso.

Brasilia, St. Cath. auf Blättern von Adenocalymmacfr.

paulistarum. — E. Ule n. 902.

Die sehr kleinen blassbräunlichen Sori treten zerstreut oder

heerdenweise auf der Unterseite der Blätter auf und sind hin und

wieder mit Darluca Filum besetzt.

250 P. Hennings.

U. Arrabideae P. Henn. n. sp.

Maculis nullis, soris hypophyllis sparsis vel dense gregariis,

punctiformibus, rotundatis, pallide ochraceis, diutius tectis; sporis

subglobosis, ovoideis vel ellipsoideis, subhyalinis, vel pallide flavis

16-25 X 14—21 u, episporio flavo vel subbrunneo, minute verrucoso;

paraphysibus basi conjugatis, clavatis vel fusoideis, subrectis vel

curvulis unguiformibusque apice obtusis vel acutis, flavis vel laete

brunneis 26—35 X 8—11 u.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Arrabidaea sub-

sericea und A. conjugata. Sept. 1887. — E. Ule n. 692 u. 909.

Die Unterseite der Blätter ist mit den sehr kleinen gelbbraunen

Sori heerdenweise bedeckt. Die Sori bestehen aus Paraphysen-

gehäusen, die oft im Ganzen abnehmbar sind. Die meist haken-

förmig gebogenen Paraphysen sind am Grunde leicht mit einander

verbunden und umschliessen die meistens eiförmigen oder elliptischen

Sporen.

U. solenioides P. Henn. n. sp.

Maculis nullis; soris hypophyllis sparsis vel subaggregatis, minutis,

subglobosis, poculi-vel cupuliformibus apice rotundato apertis, pallide

ochraceis, 180—220 u diametro, sporis triangularıbus oblique quadran-

gulis vel subglobosis, castaneis 18--30 X 15-25 « episporio primo

sublevi, tandem verrucis subhemisphaericis castaneis tecto; paraphy-

sibus basi conjugatis vermiformibus vel clavatis, curvatis, apice ob-

tusis, flavis vel brunneolis 30—80 X 8—10 u.

Brasilia, St. Cathar., Säo Francisco auf Blättern von Nec-

tandra aff. rigidae Mez. April 1885. — E. Ule n. 70.

Die Blätter tragen auf der Unterseite die sehr kleinen hellbraunen,

fast kugeligen oder pezizenähnlichen Paraphysengehäuse, die am

Scheitel eine rundliche Oeffnung besitzen, dem Substrat nur sehr lose

und im Ganzen abnehmbar aufsitzen, Diese haben, zumal wenn mehrere

Sori beisammen stehen, grosse Aehnlichkeit mit Solenia ochra-

cea und bestehen aus hakenförmig gekrümmten oder fingerförmigen

Paraphysen, die am Grunde mit einander verbunden sind und die

Sporen umschliessen. Letztere sind meist dreieckig, oft schief vier-

eckig, seltener rundlich, kastanienbraun. Die Membran ist anfangs

glatt und scheint erst später sich mit fast halbkugeligen Warzen zu

bedecken. Einmal sah ich eine breit elliptische Spore, die in der

Mitte septirt ?, fast schwärzlich und deren Membran mit halbkugeligen

Warzen dicht bedeckt (36 X 28 u) war. Wahrscheinlich ist dies eine

Teleutospore gewesen. Die Form der Paraphysenhäuschen und der

Sporen sind denen von Uredo capituliformis P. Henn. sehr

ähnlich.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 251

U. Bidentis P. Henn. n. sp.

Maculis nullis vel fuseidulis; soris sparsis vel dense gregariis

amphigenis saepe hypophyllis; minutis, pulvinatis applanatisque vel

subpatelliformibus, ochraceis, epidermide rupta cinctis; sporis ovoideis,

ellipsoideis vel subglobosis, flavis vel laete brunneis 24—34 X 22—28 u,

episporio castaneo 2—3 u crasso, sublevi vel minute verrucoso.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Bidens pilosusL. Juli 1887. —

E. Ule n. 232 u. 1426, St. Cathar, pr. Tubaräo auf Bidens helian-

thoides. April 1890. — E. Ule n. 1014.

U. Crotonis P. Henn. in Hedw. XXXXIV. p. 9.

Brasilia, Minas auf Croton sp. — E. Ule n. 898 u. 1201.

Erstere N. ist ohne Standortsangabe und ist die Nährpflanze von

der letzterer Art verschieden. Die Sporen beider Arten sind gleich

und stellen ein gelbes Pulver dar. In der Grösse weichen die Sporen

von denen des Originals etwas ab, indem sie meist nur 22— 32 X 15 —22,

die des letzteren 30-40 X 20—30 « gross sind. In der Form,

Färbung, sowie besonders in der mit langen hyalinen Stacheln be-

kleideten Membran sind die Sporen mit denen des Originals überein-

stimmend.

U. crotonicola P. Henn. n. sp.

Maculis nullis vel fuscidulis, soris amphigenis, minutis puncti-

formibus sparsis gregariisque, rotundato-pulvinatis vel hemisphaericis,

pallide ochraceis, diutius tectis, dein epidermide velata cinctis; sporis

subglobosis, ovoideis vel oblongis, pallide flavis vel fuscidulis intus

pustulatis 18—28 X 15-—22 u, episporio brunneolo 2—3 u crasso,

sublevi vel punctatulo.

Argentina, Sierra chica de Cördoba, bei La Calera auf Blättern

von Croton glandulosus L. Januar 1881. — C. Galander.

Diese Art ist von der vorigen völlig verschieden. Die sehr kleinen

punktförmigen Sporenpusteln stehen zahlreich zerstreut auf beiden

Blattseiten. Die Sori bleiben lange bedeckt und öffnen sich meist

durch ein rundliches Loch am Scheitel.

U. Dalbergiae P. Henn. in Hedw. XXXIV. p. 98.

Maculis flavis irregularibus saepe confluentibus; soris hypophyllis,

sparsis vel dense gregariis confluentibusque, primo subhemisphaericis

epidermide tectis dein erumpentibus, pulverulentis, flavo ochraceis;

sporis subglobosis, ellipsoideis, ovoidois, acutangulis, pallide flavis,

intus punctulatis 15—23 X 14—18 «u, episporio tenui, flavo brunneo

vel fuscescente, sublevi vel punctato-verrucoso.

Brasilia, St. Cathar. auf Blättern von Dalbergia variabilis —

mit Phyllachora sp. — E. Ule n. 896.

252 P. Hennings.

U. Desmodii tortuosi P. Henn. n. sp.

Maculis minutis pallidis vel nullis, soris amphigenis, plerumque

hypophyllis, sparsis vel gregariis interdum confluentibus, pulvinato-

applanatis vel patelliformibus, epidermide rupta pallida cinctis,

'a—1 mm diametro, pallide cinnamomeo; sporis ovoideis vel ob-

longis, flavo-brunneis 18—28 X 15—23 u, episporio levi, brunneo

1—2 u crasso.

Puertorico Fajardo locis cultis auf Blättern von Desmodium

tortuosum DC. 17. April 1885. — O. Sintenis,.

Die hellzimmtbraunen Sori treten meist heerdenweise auf der

Unterseite der Blätter auf, während sie auf der Oberseite ver-

einzelt stehen. Von der Uredoform zu Uromyces Hedysari-panicu-

lati (Schwein.), die stacheliges Epispor besitzt, ist vorliegende Art

jedenfalls verschieden.

"U. cyclogena Speg. Fungi Argent. pag. I. n. 45.

Brasilia auf Cassia spec. — E. Ule n. 9.

Die Sori treten nur auf der Oberseite des Blattes auf und sind

kreisförmig geordnet. — Die Sporen sind eiförmig, mit der obigen

Art gut übereinstimmend.

U. Alchorneae P. Henn. n. sp.

Soris in caulibus fructibusque eos deformantibus, sparsis vel

gregariis pulvinatis, confluentibus, epidermide rupta cinctis, ochraceis

pulverulentis uredosporis subglobosis, ellipsoideis, vel ovoideis flavo-

brunneis vel fuscis 16—22 X 15—19 u, episporio brunneo vel fusco

minute verrucoso.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo in Früchten und Stielen von

Alchornea iricura. Juli 1889. — E. Ule n. 1498 u. 1618.

Die Sori treten meist heerdenweise an den Fruchtkapseln,

welche durch dieselben deformirt und vergrössert werden, auf,

seltener finden sie sich an dem Stiel der Inflorescenz. Dieselben

sind meist pustelförmig und fliessen nach dem Aufbrechen gewöhn-

lich zusammen, so dass die Früchte und Stengel mit braunem

Sporenpulver bedeckt erscheint. Die Reste der häutigen Epidermis

ragen stellenweise schuppenartig aus der braunen Sporenmasse hervor,

U. Ipomaeae pentaphyllae P. Henn. n. sp.

Maculis flavis irregularibus confluentibusque; soris sparsis vel

gregariis aecidiiformibus, hypophyllis, primo pustulatis pallidis vel

Navis, dein apertis epidermide inflata cinctis; uredosporis subglobosis

ovoideis vel subellipsoideis, flavis vel fuscobrunneis 16-24 X 15—23 u,

episporio dense verrucoso.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Ipomaea penta-

phylla. Mai 1887. — E. Ule n. 712,

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 253

Die Sori stehen zerstreut oder heerdenweise in den gelben

Flecken auf der Unterseite der Blätter, Dieselben sind rundlich,

seltener länglich aufgeblasen und sehen in geöffnetem Zustande

fast wie Aecidienbecher aus, da sie von der aufgeblasenen, gelblichen

Epidermis bedeckt bleiben.

U. arenariicola P. Henn. n. sp.

Maculis minutis, sparsis, fuscis vel pallidis; soris hypophyllis

punctiformibus, ochraceis vel fuscis, rotundatis; sporis subglobosis

vel globoso-elliptieis, flavis vel brunneis 18—22 X 16—20 u,

episporio brunneo vel subcastaneo, levi vel minute verrucoso,

3 u crasso.

Argentina, Nevado del Castillo, Prov. de Salta, auf Blättern

von Arenaria diffusa EI. 24. März 1873. — G. Hieronymus et

Lorentz.

Die Sori treten meist zerstreut auf der Unterseite der Blätter

in bleichen oder bräunlichen kleinen Flecken auf. Das vorliegende

Material ist leider äusserst spärlich, wie bei den meisten der argen-

tinischen Pilze, da diese zum grössten Theile von Herbarpflanzen

entnommen worden sind.

U. Myrtacearum Pazschke in Fungi eur. n. 3633.

Brasilia, St. Cathar. pr. Sao Francisco auf Blättern von

Eugenia sp. Dec. 1883. — E. Ule n. 10.

U. Elephantopodis P. Henn. n. sp. u

Maculis fuscis irregularibus, soris hypophyllis, minutis pulvinato-

applanatis, rotundatis, dein cupulatis epidermide rupta cinctis,

pallide ochraceis subpulverulentis; sporis subglobosis vel late

ellipsoideis brunneo fuscis 15—20 X 14—18 u, episporio crasso,

atrobrunneo, dense verrucoso.

Brasilia, auf Blättern von Elephantopus scaber. — E.UleN, 6,

Die Sori stehen meist zerstreut auf der Unterseite der Blätter

und sind anfangs erhaben bedeckt, später vertieft, fast schüsselförmig

von der aufgerissenen Epidermis am Grunde umgeben.

U. Coccolobae P. Henn. n. sp.

Maculis sparsis, minutis atrosanguineis vel obsoletis; soris hypo-

phyllis sparsis, interdum aggregatis, punctiformibus, rufobrunneis,

pulvinatis, epidermide diutius tectis dein cinctis; sporis subglobosis,

ovoideis, oblongis vel subclavatis, interdum acutangulis, subhyalinis,

pallide flavis vel subbrunneolis 16—30 X 14—17 «, episporio minute

verrucosa, brunneolo 2—3 u crasso,

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Coccoloba populi-

folia. Sept. 1887. — E. Ule n, 728.

Die Blätter sind auf der Oberseite mit mehr oder weniger grossen,

meist punktförmigen, schmutzig rothen Flecken bedeckt, während die

BE Eye u SE Ze u ne oe En ne u ae 5 u 3 2 an Een: 2 En di u ne ae a

254 P. Hennings.

sehr kleinen Sori zerstreut oder heerdenweise auf der Unterseite der

Blätter auftreten. Diese sind meist etwas länglich, längere Zeit von

der rothbraunen Epidermis bedeckt.

U. Alibertiae P. Henn. n. sp.

Maculis flavis; soris hypophyllis sparsis vel gregariis, minutis,

pulvinato-rotundatis, pallide ochraceis, diutius tectis dein vertice

pertusis; sporis ellipsoideis oblongis, ovoideis, clavatis, raro sub-

globosis, acutangulis, pallide brunneis vel fuscis 28—45 X 26-34 u,

vertice incrassatis, episporio atrobrunneo vel fusco aculeato-verrucoso

3—5 u crasso.

Brasilia, Sao Paulo auf Blättern von Alıbertia elliptica

(Rubiacea). Mai 1887. — E. Ule n. 737.

Die hellockerfarbigen sehr kleinen Sori stehen einzeln zerstreut

oder heerdenweise auf der Blattunterseite, sie bleiben lange ge-

schlossen und öffnen sich dann meist am Scheitel durch eine rund-

liche Spalte. Die Sporen sind sehr verschieden gestaltet mit stacheliger

am Scheitel verdickter Membran,

U. nigropuncta P, Henn. n. sp.

Maculis atris punctiformibus; soris dense gregariis hypophyllis

rarius epiphyllis, disciformibus, rotundatis, applanatis, atris ca. ',; mm

diametro; sporis subglobosis, ellipsoideis vel ovoideis, flavis vel flavo-

brunneis, fuscidulis 22—28%X20—26 u episporio levi vel subverrucoso

3—# u crasso, pallide brunneo.

rasilia. Rio de Janeiro auf Blättern von Stanhopea sp.

Juli 1837. — E. Ule n. 652.

Die schwarzen punktförmigen Sori überziehen heerdenweise die

ganze untere Blattfläche und rufen auf der oberen schwarze punkt-

förmige Flecke hervor. Die Sori sind am Grunde selten von den

Resten der Epidermis umgeben, fast scheibenförmig abgeflacht.

U. Epidendri P. Henn. n. sp.

Maculis bullatis, pallidis, zona sanguinea cinctis, soris amphigenis

singulis vel aggregatis, pulvinatis, dein epidermide pallida vesiculosa

tectis, dein erumpentibus, pallide brunneis; sporis oblongis, ovoideis

saro subglobosis, saepe acutangulis, intus flavis granulatis, 22—32 X

16--26 u, episporio subhyalino usque ad 5 « crasso, sublevi vel minute

punctato-verruculoso.

Brasilia, St. Cathar. auf Blättern und Blattscheiden von Epiden-

dron sp. — E. Ule n. 1267.

Der Pilz ruft auf Blättern und Blattscheiden mehr oder weniger

grosse, meist bleiche Flecke hervor, die oft von einer blutrothen

Linie umgeben sind. Die Flecke sind bald rundlich, bald länglich

oder unregelmässig, es stehen innerhalb derselben ein oder mehrere

Sori, die aufgeblasen, längere Zeit von der bleichen Epidermis be-

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas 1. 255

deckt bleiben. Mit U. Scabies Cooke hat die Art bezüglich der

Flecke und Sori gewisse Aehnlichkeit, doch ist diese auch durch die

Sporen ganz verschieden,

U. Bambusarum P. Henn. n. sp.

Maculis fuscis vel atrobrunneis, amphigenis, rotundatis vel ob-

longis, punctiformibus, gregariis; soris amphigenis, pulvinatis, rotunda-

tis vel elongatis interdum substriiformibus diutius epidermide fusca

tectis; sporis subglobosis, ellipsoideis vel ovoideis, acutangulis,

brunneis vel lacte castaneis 22—28 rarius 31 X 20-26 a; episporio

castaneo, 3-5 « crasso, dense aculeato asperato.

Brasilia, St. Cathar. auf Blättern einer Bambusa sp. —

E. Ule n. 866.

Die Blätter sind beiderseits mit rundlichen oder fast streifen-

förmigen bräunlichen Flecken bedeckt. Die einzeln stehenden Sori

sind über das ganze Blatt zerstreut, rundlich oder länglich, oft fast

streifenförmig, mit der schmutzigbraunen Epidermis lange bedeckt.

U. Spegazzinii De Toni Sacc. Syll. VII. pag. 845.

Brasilia auf Blättern von Commelina sp. — E. Ule n. 138.

U. Dioscoreae P. Henn. n. sp.

Maculis pallidis vel fuscidulis confluentibusque; soris amphigenis,

sparsis gregariisque, patelliformibus epidermide rupta cinctis, ochra-

ceis, punctiformibus, "/;—"/ u diametro; sporis ovoideis, ellipsoideis

vel subglobosis flavo-brunneis vel fuscis intus punctulato 20-25 X

15—22 u, episporio lacte brunneo, tenui, aculeato-verrucoso.

Brasilia, Rio de Janeiro in Blättern von Dioscoraea grandi-

flora. August 1887. — E. Ule n. 1342.

Vielleicht gehört diese Uredoform zu Uromyces Taubertiana

P. Henn., doch sind die Sori anders und es treten Flecke auf.

Uredo Aneimiae P. Henn. n. sp.

Soris hypophyllis gregariis saepe nervos sequentibus, plerumque

oblongis, fusco-ochraceis, epidermide velato tectis, dein confluentibus

atro-fuscis, sporis subglobosis ellipsoideis vel ovoideis saepe acutan-

gulis pallide flavis punctatis 18--30 X 15—28 u, episporio 3 u crasso,

dense aculeato.

Brasilia, St. Cathar., Tubaräo auf Aneimia spec. und auf

Aneimia tomentosa var. fulva. Aug. 1889. — E. Ule n. 1323

u. 515.

Die Sporen auf den beiden Arten scheinen in Grösse, Form

und Bekleidung etwas verschieden zu sein, aber im Ganzen sind sie

doch übereinstimmend. Auf n. 515 sind die Sporen grösser, 23--30 X

18—28 u, und mehr kugelig, die Stacheln des stark verdickten Epi-

rn 5

>" Be.) SER EN

256 P. Hennings.

spors treten scharf hervor. Auf N. 1323 (form. sublevis) sind die

Sporen mehr elliptisch, 18-25 X 15—23 a, und ist das Epispor

nur mit kaum wahrnehmbaren Stacheln besetzt.

U. Kyllingiae P. Henn. n. sp.

Maculis fuscis confluentibus, soris amphigenis, rotundatis vel

oblongis primo pallidis dein ochraceis, minutis confluentibus, epider-

mide rupta tectis,; sporis ovoideis, ellipsoideis vel subglobosis, flavis

15-21 X 13--18 u, episporio tenui, levi, castaneo.

Brasilia, St. Cathar. Jtajahy auf Blättern von Kyllingia

caespitosa. Nov. 1885. — E. Ule n. 1421.

Die Sori stehen meist heerdenweise auf beiden Blattseiten, sie

sind rundlich oder länglich und fliessen häufig streifenförmig zu-

sammen, seltener stehen sie kreisförmig. Anfangs sind die Sori

blass, werden später jedoch schmutzigbraun und bleiben von der

längsaufgerissenen Epidermis bedeckt.

Aecidium.

A. Ephedrae Speg. Fung. Argent. pug. IV. n. 9.

Argentina, Sierra Famatina auf Ephedra. 23. Jan. 1879. —

G. Hieronymus u. Niederlein.

A. graminellum Speg. Dec. Myc. Arg. n. 29, Fung. Arg.

pug. IV. n. 91.

Brasilia, St. Cathar. Isola auf Blättern einer Graminee. Aug.

1886. — E. Ule n. 504. ”

Argentina, Concepcion del Uruguay auf Grasblättern. Sept.

1877. — P. G. Lorentz.

A. Cissi, Wint. in Hedw. 1884 pag. 168.

Brasilia, St. Cathar. Blumenau auf Blättern von Cissus

sicyoides. Oct. 1888. — E. Ule n. 1385. |

A. Mayteni Pazschke in Fung, eur. n. 3636.

Brasilia, St. Cathar., Sao Francisco auf Blättern von Maytenus

brasiliensis. — E. Ule n. 9.

A. Modiolae Thüm. in Flora 80 n. 2. var. Sphaeralceae

P. Henn. in Hedw. 1895 pag. 322

Argentina pr. Cördoba aut Sphaeralceaminiata. Oct.1881.—

Hieronymus. Ob von A. Sphaeralcea E. et E. verschieden?

A. odoratum Wint. in Hedw. 1887 pag. 13.

Argentina, Cerro del Morro, Prov. San Luis auf Blatt von

Abutilon pedunculare Kth. März 1882. — C. Galander.

A. Cordiae P. Henn. in Engl. bot. Jahrb. XVII. pag. 491.

Brasilia, St. Cathar. Isola auf Blättern von Cordia urticifolia.

Sept. 1886. — E. Ule n. 605.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 257

A. splendens Wint. in Hedw. 1885 pag. 156.

Brasilia, St. Cathar. auf Blättern von Croton sp. -— E. Ule n. 952,

A. Zanthoxyli Peck in Botanical Gazette VI pag. 275.

Brasilia, auf Blättern von Zanthoxylon sp. — E. Ule n. 1207b.

A. Loranthi Thüm., Fungi Entrer. n. 27.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Phora-

dendron sp. Nov. 1887. E. Ule n. 1408.

A. Clematidis D. €. Flor. de France II. pag. 243.

Argentina, Prov. de Cördoba, Sierra chica, Valle de la Redu-

cion auf Blättern von Clematis Hilarii Spr. Nov. 1878 u. 1881.

G. Hieronymus.

A. Eriosematis P. Henn. in Hedw. 1895 pag. 103.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Rhynchosia sp.

Juni 1887. — E. Ule n. 682 u. 9.

A. eircinnatum Wint. in Tledw. 1884 pag. 168.

3rasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von Jacaranda sp.

Jan. 1890. — E. Ule n. 1473.

A. Verbenae Speg. Fung. Arg. I. n. 56, Dec. Arg. n. 33.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern von Verbena spec.

Oct. 1890. — E. Ule n. 1031 u. 547.

A. Wittmackianum P. Henn. in Engl. bot. Jahrb. XVII pag. 17.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräio auf Dicliptera sp. u.

Justicia racemosa. Oct. 1890. — E. Ule n. 1028 u. 1320.

Diese Art ist von A. Tweedianum Speg. Dec. Myc. argent.

n. 32, welche im Original vorliegt, gänzlich verschieden.

A. ceraceum B. et Br. Fung. of Ceylon n. 847.

Paraguay pr.Paraguari auf Blättern von Tabernacemontana sp.

Oct. 1881. —- B. Balansa. Pl. du Paraguay n. 3569.

Der vorliegende unbestimmte Pilz stimmt mit dem Berkeley’schen

Original recht gut überein, nur dass bei letzterem die Pseudoperidien

am Rande stärker gewimpert sind.

A. convolvulinum Speg. Fl. Guar. nonn. pag. 22 n. 64.

Brasilia, St. Cathar. auf Ipomaea spec. — E. Ule n. 553,

901, 1223.

Argentina, Prov. de Cördoba auf Ipomaea purpurea. —

G. Hieronymus.

Dieses Aecidium gehört jedenfalls nicht zu Puccinia opulenta

Speg., ebensowenig wie das von ihm in den Dec. Myc. Arg. n. 12

herausgegebene Exemplar, mit dem die vorliegenden brasilianischen

Exemplare völlig übereinstimmen.

Hedwigia Bd, XXAV. 1890. 17

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258 P. Hennings.

A. Colignoniae P. Henn. n. sp.

Maculis flavis vel pallide ochraceis, incrassatis irregularibus con-

fluentibusque; aecidiis hypophyllis vel ad petiolos sparsis gregariisve;

pseudoperidiis sparsis vel aggregatis primo subhemisphaericis dein

apertis semiimmersis, cupuliformibus, pallide ochraceis, margine vix

denticulato, reflexo vel recto, contextu cellulis plerumque tetrangulis

vel pentagonis intus tessellato-verrucosis 23— 28 X 22—26 u, flavo-

fuscis; aecidiosporis subglobosis, ellipsoideis vel ovoideis, acutangulis,

subhyalinis flavescentibus vel fuscescentibus 15—20 X 14—18 u,

episporio subhyalino, vel brunneolo, tenui levi.

Argentina, Le Cienaga, Sierra de Tucuman auf Blättern und

Stielen von Colignonia glomerata Gris. (Nyctaginea). Mai 1874. —

G. Hieronymus u. Lorentz.

Der Pilz verursacht auf Blättern und Stengeln lebhaft ocker-

farbige, etwas verdickte Flecke von unregelmässiger Form, in denen

die anfangs fast halbkugeligen, dann geöffneten, flach-schüsselförmigen

Pseudoperidien zerstreut oder gedrängt stehen.

A. Cerei P. Henn. n. sp.

Aecidiis petalicolis sparsis vel orbicularibus; pseudoperidiis

aggregatis, cylindraceis, pallide flavis vel subalbis, primo clausis ob-

tusis dein apertis margine lacerato-denticulatis; contextu cellulis

plerumque irregulariter polyedricis, flavescentibus intus granulatis

30— 50 X 10—16 u; aecidiosporis globosis vel subovoideis vix acu-

tangulis, flavescentibus 16—22 X 15—20 «, episporio subhyalino, levi

4—4'!, u crasso,

Argentina, zwischen dem Pan de Azuacar und Colanchanga,

Sierra chica de Cördoba auf Blüthenblättern von Cereus. 11. Nov.

1881. — G. Hieronymus.

Die Aecidien stehen auf den äusseren Blumenblättern, welche

verdickt erscheinen. Die Pseudoperidien sind oft kreisförmig zu-

sammengestellt, cylindrisch am Rande tief eingeschnitten und oft

langgezähnt. Dieselben sind von sehr zierlicher Form und erinnern

in ihrer Form sehr an A. Modiolae Thüm. Es ist dies wohl die

erste Uredinee, die auf Cacteen beobachtet worden ist.

A. Serjaniae P. Henn. n. sp.

Maculis flavis vel ochraceis, irregularibus, aecidiis hypophyllis,

sparsis, pseudoperidiis orbiculariter dispositis vel sparsis, pallide flavis

primo subhemisphaericis, dein apertis, cupulatis contextu cellulis oblon-

gis polyedricis intus granulatis, subhyalinis vel flavis; aecidiosporis sub-

globosis ellipsoideis vel subovoideis, hyalino-flavidulis 14—17X13—15,

episporio tenui subflavo.

Argentina, Sierra de Tucuman auf Blättern von Serjania

fulta Gr. Febr. 1874. — G. Hieronymus et Lorentz.

Es Be Er E52 Sn a ee nei 00 alas nn - nel Lalnbuiten Zu un

Bere t . Mr ' ! j

er e ;

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 259

Der Pilz ruft gelbe oder hellbraune Flecke von unregelmässiger

Form auf Blättern hervor. Die Aecidien sind auf den Exemplaren

nur noch sehr schwach entwickelt. Sie stehen auf der Blattunterseite,

während denselben entgegengesetzt auf der Oberseite Spermogonien

auftreten.

A. Triumfettae P. Henn. n. sp.

Maculis rotundatis ca. 5 mm diametro, fuscobrunneis bullatis,

incrassatis; aecidiis sparsis hypophyllis; pseudoperidiis orbiculariter

dispositis, cupulatis, ochraceis vel fuscis, contextu cellulis oblongis

polyedricis; aecidiosporis subglobosis, ovoideis vel ellipsoideis, acu-

tangulis, subhyalinis vel flavidulis 15—20 X 13—16 u, episporio levi,

Navidulo vel fuscidulo.

Argentina, L.oreto in den Misiones auf Blatt von Triumfetta sp.

21. März 1884. — Nicederlein.

Es liegt nur ein Blattstück vor, auf dem sich wenige Accidien

finden. Die Flecke, welche der Pilz hervorruft, sind rundlich und

schmutzigbraun. — (Vielleicht zu Pucciniosira pallidula (Speg.)

P. Henn.)

A. Desmodii P. Henn. n. sp.

Maculis flavis vel flavobrunneis, rotundatis vel irregularibus

confluentibusque aecidiis hypophyllis sparsis vel confluentibus pseudo-

peridiis dense gregrariis, subreticulatis, minutis vix elevatis, flavis

cupuliformibus, margine integro erecto; contextu cellulis oblongis,

polyedricis, hyalinis, intus granulatis, 15—25 X 13—17 u; aecidiosporis

subglobosis, ellipsoideis vel ovoideis, levibus, hyalino-flavescentibus

14—24 X 13—18.

Brasilia, auf Blättern von Desmodium sp. — E. Ule n. 97.

Die Pseudoperidien stehen dicht gedrängt neben einander und

sind wenig hervorragend, schr flach, so dass sie ein fast netzförmiges

Gebilde darstellen.

A. Randiae P. Henn. n. sp.

Maculis foliicolis, fuscis vel nigricantibus, bullatis, pustulatis usque

ad 3 cm longis, 2 cm latis, 2 mm crassis, rotundatis, applanatis, tuber-

culosis, pseudoperidiis semiimmersis, incrassatis vertice rotundato-

pertusis, margine crasso, contextu cellulis oblongis vel subglobosis,

polyedricis, flavo-fuscis 36 - 60X 25-35; aecidiosporis subglobosis,

ovoideis vel ellipsoideis, acutangulis, flavo-fuscescentibus, granulatis

20—28 X 18—26, episporio fuscobunneo.

Brasilia, St. Cathar. Minas und bei Theresopolis auf Blättern

von Randia spec. April 1889, Jan. 1884. — E.Ule n. 1211 u. 562.

Der Pilz ruft auf Blättern von Randia grosse blasige, gallen-

artige Auftreibungen von, im trockenen Zustande, schwarzer Färbung

hervor. Die ziemlich dicht stehenden Perithecien sind anfangs ganz

eingesenkt und treten nur als runzelige Warzen hervor. Später

17*

;

260 P. Hennings.

öffnen sich diese durch ein rundes Loch am Scheitel. Der Rand

der Oeffnung ist verdickt. Wahrscheinlich sind die Gallen im frischen

Zustande mehr fleischig und anfangs von anderer Färbung als im

trockenen Zustande.

A. Uleanum Pazschke in Hedw. 1892 p. 95.

Brasilia, St. Cathar,. pr. Tubaräo aufSolanum sp. Oct. 1890. —

E. Ule n. 1027.

A. solaninum Speg. Fung. Argent. n. IV. p. 96.

Brasilia, St. Cathar. pr. Tubaräo auf Blättern und Stengeln von

Solanum sp. mit Tuberculina persicina. Sept. 1890. — E. Ule

n. 1030, 659.

Argentina, Sierra de Cördoba auf Acnistus arborescens

Schlecht. Sierra chica de Cördoba auf Bassovia spina alba Gr.

Jan. 1876. — C. Hieronymus; Prov. de Tucuman auf Brachistus

Grisebachii Hieron. Febr. 1872. — P. G. Lorentz.

A. Solani argentei P. Henn, n, sp.

Maculis incrassatis, cretaceis vel fuscescentibus rotundatis, pseudo-

peridiis gregariis orbiculariter dispositis amphigenis, rotundato-sub-

hemisphaericis, pallide ochraceis, diutius clausis, dein erumpentibus

margine integro; aecidiosporis subglobosis vel ellipsoideis acutangulis,

subhyalinis vel intus flavis 14—17 X 13—15 4, episporio hyalino vel

flavescenti levi; contextu cellulis subglobosis vel oblongis, polye-

dricis, hyalinis, vel flavis intus granulatis 26— 36 u.

Brasilia, St. Cathar. auf Blättern von Solanum argenteum. —

E. Ule 659

Dies Acciduum ist von den obigen sowie von andern gänzlich

verschieden, besonders durch die fast kreideweissen dicken Flecke,

in denen die halbkugeligen, schr lange geschlossen bleibenden Becher

stehen.

A. asclepiadinum Speg. Fung. Guar. p. 26 n. 71.

Argentina, pr. Cördoba auf Stengeln und Blättern von Morre-

nia brachystephana Gr. 6. Nov. 1879. — C. Galander,

A. Philibertiae P, Henn. n. sp.

Maculis flavis fuscescentibus, rotundatis, aecidiis hypophyllis

petiolisque sparsis; pseudoperidiis gregariis cylindraceis, pallide flavis,

primo clausis, dein apertis margine minute inciso, denticulato,

erecto vel parum recurvo, e cellulis oblongis vel subgloboso -ellip-

soideis, polyedricis, flavidis 24—33 X 22—30 „ intus verrucoso

tessellatis compositis; aecidiosporis subglobosis, ellipsoideis vel

ovoideis, acutangulis intus flavis 18—25 X 15—23 «, episporio levi

subhyalino vel flavidulo 2—3 u crasso.

Argentina, Prov. de Catamarca auf Blättern und Blüthenstielen

von Philibertia flava Meyen. Juli 1878. — F. Schickendantz.

Beiträge zur Pilzflora Südamerikas I. 26]

Die cylindrischen, bis 1 mm hohen hellgelben Pseudoperidien

stehen dicht gedrängt in rundlichen gelben oder bräunlichen zerstreuten

Flecken auf der Unterseite der Blätter sowie vereinzelt auf den etwas

verdickten und gekrümmten Blüthenstielen. Von A. asclepiadinum

Speg. ist diese Art schon äusserlich sehr verschieden. Ob dies

Aecidium vielleicht zu Puccinia Philibertiae E. et E. gehört, lässt

sich vorläufig nicht entscheiden.

A. Hyptidis P. Henn. in Hedw. 1895 pag. 337.

Brasilia, Minas auf Blättern von Hyptis verticillata Jaq.

April 1889, Tagua, Serra do Mar auf Hyptis sp. Dec. 1886. —

E. Ule n. 1217, 555, 897.

A. Mikaniae P. Henn. n. sp.

Maculis fuscis, rodundatis; aecidiiss hypophyllis sparsis, vel

gregariis, pseudoperidiis singularibus paucis sparsis vel multis gregariis

suborbiculariter dispositis, primo subhemisphaerieis clausis, dein

apertis cupuliformibus flavis vel subfuscis, margine fimbriatis, revolutis

ca. !!; mm diametro, contextu cellulis oblongis, polyedricis, favidulis

vel fuscidulis, granulato verrucosis 24 -32xX15—24 u, aecidiosporis

ellipsoideis, ovoideis vel subglobosis pallide flavis 13—-18 X 11-—-16 u.

Brasilia, St. Cathar. pr. Blumenau auf Blättern von Mikania

confertissima. Nov. 1888 u. auf Mikania sp. — E. Ule n. 911,

1435, 146, 314.

Der Pilz bildet auf der Oberseite der Blätter zerstreut stehende,

mehr oder weniger grosse rundliche braune Flecke, in denen auf

der Unterseite die Aecidien sich befinden. Diese bestehen aus 1 oder

wenigen, anderen Falls aus mehreren, bis 20 Pseudoperidien, die meist

gedrängt, oft fast kreisförmig angeordnet sind. Ob dies Aecidium zu

Puccinia Spegazzinii De Toni gehört, ist leider nicht festzustellen.

A. Niederleinii P, Henn. n. sp.

Maculis flavis vel brunneolis, irregularibus vel rotundatis, aecidiis

hypophyllis, pseudoperidiis gregariis orbiculariter dispositis, pallide

ochraceis vel subflavis, cupulatis, minutis, margine vix laceratis,

pallidis, contextu cellulis oblongis vel ovoideo-globosis 20-35 X

15—23, pallide flavis vel fuscescentibus granulato-verrucosis; sporis

subglobosis, vel ovoideis, acutangulis, flavo-brunneis 15—18—14—17 yı

episporio tenui, brunneolo, levi.

Argentina, Prov. de la Rioja auf Blättern von Conyza

chinensis Spr. Jan. 1879. — G. Hieronymus et Niederlein.

Der Pilz verursacht auf der Blattoberseite rundliche oder unregel-

mässige gelbbraune Flecke, in denen auf der Unterseite die Pseudo-

peridien kreisförmig heerdenweise stehen,

Von A. Mac Owanianum Thüm. u. A. Conyzae P. Henn.

ist die Art verschieden.

an 5.0 dd ae

in. in ah er une A el ne Ka

a a en | a Ag

262 P. Hennings.

A. Spegazzinii De Toni in Sacc. Syll. VII. pag. 802.

Argentina, Sierra de Tucuman, Cuesta del Garabatal auf

Blättern von Erigeron album. Jan. 1874. — G. Hieronymus et

Lorentz.

A. hualtatinum Speg. Fungi Fuegiani pag. 52 n. 145.

Argentina, Prov. de Catamarca auf Blättern von Senecio

Gillesii Ph. 1878. — F. Schikendantz.

A. Vernoniae P. Henn. n. sp.

Maculis sparsis, fusco-brunneis, rotundatis interdum nervos

sequentibus; aecidiis epiphyllis sparsis; pseudoperidiis gregariis, sub-

orbiculariter dispositis vel sparsis, primo subhemisphaericis, fuscidulis,

dein subeylindraceis, niveis, margine laceratis, tenuibus; contextu cellu-

lis oblongis raro subglobosis acutangulis, hyalinis, granulato-verrucosis

25—50 X 20—30 ı; aecidiosporis subglobosis vel ellipsoideis acutan-

gulis, hyalinis vel intus Navis 18—26 X 18—22 u, episporio levi vel

granuloso.

Brasilia, Rio de Janeiro auf Blättern von Vernonia sp.

Juli 1887. — E. Ule n. 658.

Auf der Oberseite der Blätter ruft der Pilz meist rundliche

braune Flecke hervor, in denen einzeln zerstreut oder fast kreis-

förmig die anfangs geschlossenen, fast halbkugeligen, dann fast

cylindrischen, von einer sehr zarten weissen Peridie umgebenen

Becher stehen. Die Sporen sind fast kugelig oder ellipsoidisch, im

Innern gelb, gelbbräunlich oder ganz farblos.

A. baccharidicola P. Henn. n. sp.

Aecidiis caulicolis, pseudoperidiis solitariis vel aggregatis cortice

fissu erumpentibus, cupulatis. pallide flavis; aecidiosporis globosis,

ovoideis vel ellipsoideis, hyalinis levibus 16-23 X 14—20 u; con-

textu cellulis oblongis vel elongato-ovoideis, acutangulis, hyalinis

intus Navidulis, granuloso-tessellatis 20—30 X 14—24 u,

Argentina, Buenos-Ayres, Sierra Ventana auf Stengeln von

Baccharis spec. April 1881. — P. G. Lorentz.

Die Pseudoperidien brechen einzeln oder gehäuft aus der längs-

aufgerissenen Rinde der Zweige hervor. Dieselben haben mit den

zu P. evadens Harkn. gehörigen Aecidien gewisse Aehnlichkeit,

besonders bezüglich des Auftretens, doch scheint die Art genügend

verschieden zu sein. Letztere gehört nach Dietel’s Mittheilung wohl

besser zu Caeoma.

ee aa ne A a u euer vr na a 1 A Zr Te Ge Fe A, un na

2 DR a De Eng an a Mr Be ne at: u ka a En 2

Beiträge zur Phykologie.

Von Paul Richter, Leipzig.

1.')

Aphanizomenon Morren, Oscillatoria Agardhii Gomont, Plectonema

Thuret.

In den jüngst erschienenen Fasc. XIV et XV meiner Phyko-

theka universalis habe ich gegen frühere Gewohnheit unterlassen,

zu etlichen Species längere Bemerkungen, und zu spec. nov. Diagnosen

zu geben; es sollte der Umfang der Etiquetten nicht zur Unbequem-

lichkeit gesteigert werden und im Uebrigen erschien mir eine Etiquette

auch nicht der geeignete Ort für kritische Erörterungen und sonstige

Mittheilungen, dafern bei der beschränkten Auflage einer Exsiccaten-

sammlung eine weitere Verbreitung wenig geboten ist. Daher habe

ich mich entschlossen, hier in dieser Zeitschrift meine Studien

als abgeschlossene Publikationen unter Hinweis auf ausgegebene

Species in meiner Phykotheka niederzulegen, wobei der Vortheil sich

ergiebt, dass meine Daten leicht controlirt werden können. — Doch

nun zur Sache!

In Nr. 745C habe ich Aphanizomenon flos aquae Ralfs

mit Sporen und Heterocysten ausgegeben und mit diesem, entgegen

der Auffassung Bornet's und Flahault’s. Aphanizomenon

incurvum Morren vereinigt; in Nr. 745B ist Aph. flos aquae mit

Heterocysten, aber ohne Sporen, in Nr. 745 A dagegen steril, Oscilla-

toria Agardhii Gomont entsprechend, ausgegeben. Ueber die erste

Species, welche die zwei anderen mit umfasst, will ich schreiben.

Consequenzen führen mich dann auf systematisches Gebiet, speciell

zu Plectonema Thuret.

Bornet und Flahault?) haben Aph. incurvum Morren unter

Wiedergabe der Originaldiagnose als besondere Art in ihrer Revision

mit aufgeführt, nachdem Rabenhorst°) dieselbe als solche, allerdings

ohne Begründung, schon beseitigt hatte. Ich muss daher auf meine

Stellungnahme etwas näher eingehen und diese rechtfertigen. Die

1) Ueber Cosmaridium silesiacum P. Richt. u. Gloeocapsa 'bituminosa Ktz.

wird ein zweiter Artikel handeln.

2) Annal. des sc. 7€ ser. Bot. T. VII p. 241 u. 242 in Rev. des nost. heter.

3) Rabenh. Flora europ. alg. II. p. 395 bei Sphacrozyga flos aquae.

B A

264 Paul Richter,

Verfasser der „Revis. des nost. heter.“ unterscheiden A, flos aquae

von A. incurvum durch die Gestalt der Flöckchen und Länge der

vegetativen Glieder. A. flos aquae soll gerade Flöckchen (laminae),

A.incurvum aber gekrümmte besitzen, ersteres Glieder von 5-6 u

Dicke und 5—15 u Länge, letzteres solche, deren Länge 2—8 mal

mehr beträgt als die Breite. Morren’s*) Diagnose enthält keine

Maasse, da zu seiner Zeit noch nicht mikroskopisch gemessen wurde.

Bornet und Flahault sind in ihren Angaben den Diagnosen und Ab-

bildungen von Morren, Allman und Ralfs gefolgt. Ralfs bildet in seiner

Monographie der Nostochineen °) die Flöckchen von A. flos aquae ge-

rade ab, obwohl er selbst die Alge lebend, wie er schreibt, nie gesehen

hat; so giebt sie auch Allman.‘) Ralfs will den Flöckchen keine be-

sondere Bedeutung beimessen, nicht weil ihre Gestalt variabel sei,

sondern weil man an getrockneten Exemplaren nichts davon entdecken

könne. Morren ist in seinen Angaben inconsequent. In seiner

Diagnose von A. incurvum (p. 11.1. c.) sind die Flöckchen ‘) nur als

gekrümmt bezeichnet, allein in dem ausführlich beschreibenden Theil

lautet es anders. Hier (p. 6) werden auch spindelförmige, gerade

zugegeben. Es heisst daselbst: „Tous sont aplatis, lamellaires,

et ont une forme qui se rapproche de celle d’une demi-lune

ou d’un fuseau, uniques dans le jeune äge, soudes dans un äge plus

avance. Fait-on deposer l’eau qui contient de ces flocons, dans une

assiette, on trouve d’abord tous les corps semi-lunaires ou fusiformes

scpares et distans, uniformement dans le liquide.“ Dann p. 9: „Une

seule lamelle semi-lunaire ou fusiforme peut presenter toutes ces

differentes conditions d’organisation dans les filets.“ In der Ab-

bildung giebt Morren in Fig. L eine grosse Zahl einzelner Flöckchen

in natürlicher Grösse, die meisten sind hier schwach gekrümmt, nur

ganz wenige gerade, in Fig. 2 werden die grösseren, zusammen-

gesetzten dargestellt, von denen die überwiegende Zahl halbmond-

förmig, eine nicht unbedeutende Menge dagegen sigmaförmig ist; zer-

streut finden sich gestreckte Formen vor. Gemeint sind in den

Diagnosen wohl immer nur die zusammengesetzten Flöckchen, die

beim Sammeln hauptsächlich in die Erscheinung treten, nicht die

einzelnen. Kützing nennt die Flöckchen von Limnochlide flos

*) Morren, Recherches physiologiques sur les hydrophytes de la Belgique,

lu & Ta scance du 4 juillet 1835. Mcmoir. le l’Acad. royale des sc, et belles lettres

de Bruxelles 1838. XI. p. 11.

?) Annals and Magazine of nat. hist. Vol, V. 1850. Pl. IX, f£, 6,

*) Allman, Observat. on Aphanizomenon flos aquae in Quart. Journ. Vol. II.

1855: PESBL £-%

’) Aus der Abhandlung Morren’'s, die in ihrer Art sehr gründlich ist, geht

hervor, dass die Flöckchen von ihm für eine Pflanze, für ein Individuum gehalten

werden, die sie bildenden Fäden für die Elemente.

Beiträge zur Phykologie. 265

aquae (= A. flos aquae) in Spec. alg. p. 286 sichelförmig, die nach

Ralfs’ und Allman’s Abbildung gerade sein sollten, denn Ralfs be-

stätigt (l. c. p. 339 u. 340), dass Limnochlide flos aquae identisch

mit A. flos aquae sei. Rabenhorst (l. c. p. 395) lässt die Form

der Flöckchen (für Sphaerozyga los aquae) unberücksichtigt, des-

gleichen Kirchner, llansgirg und Cooke. Auf Papieraufsamm-

lungen kann man selten die Flöckchen noch wiederfinden, was schon

Ralfs beklagte, denn beim Auftragen lösen sie sich allzuleicht auf,

beim Eintrocknen kommt es wohl wieder zu ciner Vereinigung von

Fäden, nur von anderer Art, so, wie sich auch andere fädige Algen

beim Eintrocknen zusammenlegen. Schr wohl erhaltene Flöckchen

von A. flos aquae lieferte Hilsein Rabenhorst’s Algen Europas

Nr. 1463 als Sphaerozyga flos aquae Rabenh.; das Material wurde

aber auch an der Fundstelle sofort aufgetragen. Es zeigt gerade und

gekrümmte Flöckchen. — Ich sammelte A, flos aquae im August 1884

im grossen Teiche zu Altenburg im I. Sachsen und fand die Flöckchen

sichelförmig, gerade und sigmaförmig. Das Material ist mitgetheilt

in Nr, 745C der Phykoth. univ. An sich hat die specielle Gestalt der

Flöckchen geringe Bedeutung,

hinweggegangen sein, wenn nicht Bornet und Flahault diese als

- specifisches Merkmal verwendet hätten. Ich fand bei der Altenburger

Alge die zusammengesetzten Flöckchen bis zu 1 cm Länge bei 3 mm

ich würde auch ganz kurz darüber

Dicke, die sich constant zeigte; die Flöckchen erwiesen sich in der

Mehrzahl als sigmaförmig,

und Spindelform; erblicken liessen. Ahlborn °®) beschreibt die Flöck-

chen von Byssus flos aquae (A. flos aquae) in ihrer Gestalt als

wechselnd wie folgend:

deren verschiedene Lagen sie in Sichel-

„Die Flöckchen erscheinen meist kurz und gedrungen an den Enden in

stumpfe, spindelförmige Spitzen ausgezogen, 1—2 mm lang. Zuweilen auch lagern

sich mehrere solcher Flöckchen zu strangförmigen Gebilden an- und neben-

einander, oder das kurze Flöckchen wird durch eine eigenartige Gleitbewegung

der Fäden erheblich verlängert. Da, wo der Wind mit den oberflächlichen

Wasserschichten die Algenmassen gegen das Ufer treibt, bedecken sie in einer

fingerdicken rahmartigen Schicht die Oberfläche des Wassers’) und man kann

in ruhigen Buchten Flöckchen und Strähnen von 10—20 mm beobachten. Im

Aquarium konnte ich an einzelnen kurzen Flöckchen genau verfolgen, wie die-

selben sich zu eineın aus zwei oder drei schmalen mondsichelförmigen Gliedern

bestehenden Strange auflösen. Viele Flöckchen, die am Nachmittag in das

Aquarium übertragen waren, hatten über Nacht die Gestalt eines langen, schwach

S-förmig gekrümmten Fadens angenommen.“

s) Ahlborn Fr., Ueber die Wasserblüthe Byssus flos aquae und ihr Verhalten

gegen Druck in Verhandlungen des Naturw. Vereins in Hamburg 1894, Dritte

Folge II. p. 25—36.

®») Ahlborn beobachtete die Wasserblüthe von A. flos aquae in der Aussen-

und Binnenalster in Hamburg.

Br Zu re a a Ze

Fb a a al re a and

266 Paul Richter,

Auf die besondere Gestalt der Flöckchen kann die Systematik

gar keine Rücksicht nehmen, denn auch die einzelnen Flöckchen

verändern sich durch Gleitbewegung der Fäden. Hierüber giebt

Ahlborn interessante Mittheilungen:

„Unter dem Mikroskop war bei hinreichend starker Vergrösserung deut-

lichst zu erkennen, dass an der Oberfläche des Flöckchens einzelne Fäden glei-

tend gegen die Pole vorgezogen wurden, so dass sich eine immer länger wer-

dende Spitze von Fäden bildete. Stellenweis glitten die Fädchen der Alge auf

der einen Seite des Flöckchens nach links, auf der anderen nach rechts entlang.

Die Geschwindigkeit der Gleitbewegung war verschieden: das eine Mal be-

obachtete ich, dass die gegenseitige Verschiebung zweier Fäden um eine Zell-

länge in einer Minute erfolgte, ein anderes Mal betrug sie in 1/, Minute 8 Zell-

längen zu 1,5 Zellbreiten. Mehrfach hatte ich Gelegenheit, zu sehen, dass einzelne,

frei über den Rand des Flöckchens herausragende Fädenenden eine oscillirende

Bewegung ausführten, wie sie bei den verwandten Algen, Öscillaria und Nostoc (?),

so vielfach vorkommt. Die Öscillation hin und zurück erfolgte innerhalb !/, Mi-

nute, wonach wieder etwa 1 Minute Ruhe eintrat.“

Nach Ahlborn können die Fäden nur durch Öberflächen-

anziehung zu einem Flöckchen zusammengehalten werden, da es ihm

nicht gelungen ist, durch Jodlösung eine Scheidenbildung sichtbar zu

machen. Das seitliche Ausziehen der Flöckchen betrachtet er als

ein Mittel, die Nahrung aufnahmefähige Oberfläche zu vergrössern und

einen Zerfall in einzelne nur lose zusammenhängende, spindelförmige

Theilflöckchen zu bewirken, wenn der Flocken einen gewissen Um-

fang erreicht. Dass die Theilllöckchen bei bewegtem Wasser sofort

auseinandertreten, aber in ganz stillen Buchten zusammenbleiben

und ansehnliche strangförmige wie auch kugelige Aggegrate bilden,

berichtet Ahlborn des weiteren. Man sieht also, dass es nicht den

natürlichen Thatsachen entspricht, wenn die besondere Gestalt der

Flöckchen wichtig für die Speciesunterscheidung angesehen wird,

Was nun den 2. Punkt betrifft, die aussergewöhnliche Länge der

Glieder bei A. incurvum, welche nach Morren’s Diagnose das

2—8fache der Länge betragen solle, so müssen zunächst seine Ab-

bildungen und Beschreibung berücksichtigt werden. Dann wird klar,

dass sich die Länge auch auf die Heterocysten und Sporen mit be-

zieht; sind beide im Text auch nicht unterschieden, so lassen sie sich

in seiner Beschreibung und Abbildung doch herausfinden. Die Spo-

ren mögen noch jung gewesen sein, sonst wäre für Morren eine

bedeutendere Länge herausgekommen. Die Heterocysten sind

unschwer in Fig. 9, 10 und 11 zu erkennen. Morren schreibt pag. 9

von aufgelösten Fäden und freigewordenen Zellen, unter denen er

solche gesehen habe, die er leicht für Navicula oder Bacillarien

überhaupt hätte halten können, wenn er nicht ihren Ursprung ge-

kannt. In diesen Fällen hat Morren junge Sporen gesehen, die dem

Umriss der Gürtelseite von Navicula hemiptera Kütz. sehr

aa BE ke ai Ki Be ed 50 See > > sm Be " BER WE a BE Fe en En ci

Beiträge zur Phykologie. 267

gleichen. In Fig. 6 ist die längste freie Zelle eine junge Spore; sie

ist siebenmal länger als breit. In Fig. 11 bildet er einen Haufen frei

gewordener gewöhnlicher Zellen, untermischt mit einigen Heterocysten,

ab; erstere sind meist doppelt so lang als breit, nicht länger. Er

schreibt in pag. 9, dass die Zellen in jungen Fäden einmal länger

als breit seien, sich später bis zu viermal der Breite verlängern, und

solche Fäden bildet er in den Fig. 6,7 und 8 ab. Aus der Figuren-

erklärung ersehen wir, dass er die Fäden mit durchgehend so langen

Zellen als ältere bezeichnet. Zellen mit doppelter und dreifacher

Länge in Rücksicht auf die Breite, wie in Fig. 6 und 7, kommen

bei A. flos aquae auch vor, in Fig. 8 hat Morren einen abgestor-

benen Faden abgebildet, mit Zellen ohne Inhalt. „Filet confervoide

plus Age. Les articles sont plus longs et transparens‘, sagt er in der

Figurenerklärung. Es kommt bei absterbenden Fäden vor, dass die

jüngsten Scheidewände zuerst resorbirt werden und so die langen

Zellen entstehen. Sie sind hier bis siebenmal länger als breit. Es

kommen übrigens bei A. flos aquae so lange und noch längere

Zellen gegen das verdünnte Fadenende hin vor.

Der zweite Unterschied, welcher zwischen A. incurvum und

A. flos aquae in der Länge der Glieder bestehen soll, würde also

auch wie der erste in Wegfall kommen.

Warum, könnte man fragen, ist die von Morren eingehend be-

schriebene und gut abgebildete Species nicht sicher wiedererkannt

worden, und bis in die neueste Zeit zweifelhaft geblieben? Daran ist

nicht allein die grössere Länge der Glieder schuld, die, wie wir gesehen,

auf Rechnung junger Sporen und abgestorbener Fäden mit kommt,

sondern die fädigen, spiraligen Fadeneinschlüsse in den unteren

Zellen von Fig. 8 waren störend. Ich wusste diese abgestorbenen

Fäden seither nicht zu deuten, ich glaubte, Morren habe hier einen

alten Faden von Conferva, der unter der Masse mit vorgekommen,

irrthümlicher Weise für Aphanizomenon gehalten und mit abge-

bildet.

Erst seit ich die sogenannten rothen Körner und Bälkchen

von Gloiotrichia echinulata studirt habe, verstehe ich diese

Figur. Es sei mir ein kurzes Wort darüber gestattet. Im 2. Theile

der Forschungsberichte der Biologischen Station zu Plön habe ich

die „rothen Körner, Bälkchen und Strichelchen“ für amorphen Schwefel

angesprochen, wegen ihrer Aehnlichkeit mit den Schwefeltröpfchen

bei Beggiotoa. Klebahn hat in Flora 1895 pag. 240 auf Grund

einer chemischen Untersuchung, von Dr. Hausmann in Bremen

ausgeführt, diese Annahme zurückgewiesen und Gehalt von Schwefel

verneint. Dieser positiven Thatsache gegenüber zog ich ın der

Sitzung der Naturforschenden Gesellschaft zu Leipzig am

7. Mai 1895 meine Hypothese zurück, erklärte aber auch, dass ich

an a

268 Paul Richter.

der von Klebahn!®) und Strodtmann'!) ausgesprochenen An-

sicht, die „rothen Körner“ seien Gasvacuolen, nicht beitreten könne,

da ich in ausgefrorenen Gloiotrichiazellen die rothen Körner ganz

ebenso, sogar etwas reichlicher angetroffen hätte, und dasselbe FEr-

gebniss habe Klebahn bei Erhitzung gehabt. Ich legte in diesem

Vortrage dar, dass die „rothen Körner und Bälkchen“ Zerklüftungen

des Protoplastes seien, die bei unterverbesserten Linsen und hoher

Einstellung roth, bei überverbesserten und gleicher Einstellung bläu-

lich gesehen werden. Aphanizomenon zeigt im Protoplast die-

selben Zerklüftungen mit denselben optischen Erscheinungen wie

Gloiotrichia echinulata. Morren hat ein überverbessertes Mikroskop

(v. Chevalier) benutzt, er sah bläuliche Körner und Striche; die

Farbe, in der er sie sah, bezeichnete er als blaugrün (vert glauque).

Ganz blau konnte er sie nicht sehen, da sich so kleine blaue Punkte

in grünlichem Felde nicht abheben. Diese punktartigen Zerklüftun-

gen resp. Körner, die ich in meinem Mikroskope röthlich sehe, weil

es unterverbessert ist, nannte Morren „spherioles“ oder „propagu-

les“, die linienförmigen Zerklüftungen „filets spiraloides“. Letztere

wird er in Fig. 8 besonders schön gesehen haben, da der Zellinhalt

entfärbt war. Morren hält seine „propagules“ und „filets spira-

loides“ für harzige Bläschen und die Membran der Zellen für glasig;

er construirt nun elektrische Spannungen und Contactwirkungen

und erklärt daraus die Bewegung der einzelnen Fäden und deren

Bildung zu Lamellen, die sich dann zu grossen Flocken vereinigen.

Er behandelt das in dem 3. Theile seiner Arbeit, überschrieben

„Physiologie de l’Aphanizomene“ und beschreibt die Vorgänge so,

wie das jüngst von Fr. Ahlborn,!®) nur specieller, geschehen ist.

Originalexemplare von Morren liegen leider wohl nicht vor.

Gefunden wurde Morren’s Aphanizomenon angeblich von Thomp-

son im „Ballydrain Lake“ 1838, dann von Allman bei Dublin

und von Moore. Ralfs'#) rechnet Allman’s Specimina zu Apha-

nizomenon flos aquae (Linn.). Aphanizomenon incurvum

Morren führt er in seiner Arbeit „On the Nostochineae“ 14) als selbst-

ständige Art zwar mit auf, giebt aber keine Diagnose dazu; er be-

dauert, darüber keine genügende Auskunft geben zu können, kommt

zu der Meinung, dass Kützing wohl recht habe, wenn er A. incur-

vum Morren für Limnochlide flos aquae Kütz. halte. Thomp-

son’s A. incurvum verhalte sich in Bezug auf Farbe und Form

10) Flora 1895, p. 240—82.

11) Forschungsberichte der Biolog. Anstalt zu Plön, 3. Theil, p. 171, 172. —

Biolog. Centralbl. 1895, No. 4.

12, Ahlborn.c.

23) Ralfs I. c.

14) Ralfs I, c. p. 342.

; u ; k r ie ee ar

Beiträge zur Phykologie. 269

verschieden von all seinen Exemplaren von A. flos aquae, die Par-

tikelchen seien rundlich und punktähnlich. So im Habitus fand er

auch die Exemplare von Moore in Grösse und Form von Fliegen-

koth, die Faden zwar parallel, aber nicht so dicht wie bei Aphani-

zomenon flos aquae, von einem Schleim zusammengehalten, der

bei Aphanizomenon bekanntlich fehlte; sie seien nicht in Bündeln

liegend gewesen. In keiner Hinsicht, ausgenommen die parallele

Anordnung, entsprächen die Fäden Morren’s Beschreibung, äusserte

sich Ralfs. — So gross wie Fliegenkoth, meine ich, sind die auf

Papier eingetrockneten Kügelchen von Gloiotrichia echinulata.'?)

Dazu passt der Schleim, und parallele Fäden erhält man von letzt-

genannter Alge, wenn nur einzelne Ausschnitte untersucht werden.

A. flos aquae, mit dem A. incurvum nach meiner Auffassung

identisch ist, kommt auch ohne Ileterocysten und ohne Sporen

vor, mit Fäden zu Bündeln vereinigt, aber auch frei, nicht in Bündeln,

wovon noch später die Rede sein wird. Wie steht es denn mit den

Heterocysten? Es kommt A. flos aquae seltener vor nur mit Hetero-

cysten, häufiger ohne solche, aber mit Sporen, oder mit beiden zu-

gleich an demselben Faden. Kützing hat in „Species algarıum“ keine

besondere Bezeichnung der Heterocysten für Limnochlide (= Aphani-

zomenon), er fasst sie unter dem Namen Spermatien mit den Sporen

zusammen. Ralfs hebt in seiner Monographie der Nostochineen aus-

drücklich hervor, dass sich Aphanizomenon durch das Fehlen der Hete-

rocysten (vesicular cells) von allen Nostochineen unterscheide. Obwohl

er A.flos aquae zur Zeit der Abfassung seiner Arbeit nur nach trockenem

Material kannte, so ist daraus nicht ohne Weiteres zu schliessen,

dass er sie übersehen habe, denn er kennt sie bei anderen Gattungen

sehr genau, sondern vielmehr dies, dass die Heterocysten bei Apha-

nizomenon nicht immer auftreten, häufiger fehlen. So habe ich in

den Exsiccaten der Rabenhorst'schen Algen bei No. 246, 410 und

1463 keine Heterocysten gefunden, nur in No. 1463b, wo Sporen und

Heterocysten sich vorfanden, gleichwie in No. 745C meiner Phyko-

theka, dem Materiale aus dem grossen Teiche in Altenburg H, S.

Der Erste, welcher Heterocysten bei Aphanizomenon flos aquae

nachwies und abbildete, ist Allman.'!“%) Er fand im zoologischen

Garten zu Dublin diese Alge zuerst nur mit Heterocysten, später

bildeten sich Sporangien aus. Der eine Faden trug nur Heterocysten,

der andere nur Sporangien, so dass es ihm zweifelhaft blieb, ob bei-

derlei Organe an demselben Faden je vorkommen. An dem Alten-

5) Man vergleiche die Exsiccaten in Rabenh. Alg. Europ. No. 2540 und Phy-

theka univ. Fasc. XII No. 587.

16) (Juart. Journal 1855. Vol, III. p. 21—25. Pl. II. Observations on Apha-

nizomenon flos aquae and a species of Peridinea.

ee Till 3 nn a a in in m a nn a anne a nn nn nn 4a X Rn Dh DE el a Zn nalen a in aa

270 Paul Richter.

burger Material (Phykoth. univ. No. 745 C) ist nachzuweisen, dass das

bestimmt vorkommt. Ich fand hierin Heterocysten, 7 # dick und bis

17 « lang, mit Sporen an demselben Faden, neben denselben und

auch entfernt davon. Dieser Umstand könnte eine Einstellung von

Aphanizomenon bei Anabaena als geboten erscheinen lassen, allein ich

würde eine derartige Neuerung nicht gutheissen; die Gattung Anabaena

würde dadurch zu sehr belastet und der systematische Ueberblick

ohne Noth erschwert. Aphanizomenon hat in der Flockenbildung, mag

diese auch unterbrochen werden, doch einen hinlänglichen Charakter.

Ich betrachte es daher auch als einen Fehler, dass Rabenhorst '”)

A. flos aquae zu Sphaerozyga stellte. Nach seiner Diagnose von

letzterer passt unsere Alge gar nicht dahin. Zudem erwähnt Raben-

horst in der Speciesdiagnose gar nichts von cellulis perdurantibus.

Borzi!'®) stellt Aphaniz,menon mit der einzigen Species flos aquae

zu seiner Tribus „Isocysteae“. Er kannte die Gattung nur nach

‚einem von Dr. Kirchner ihm gesandten Exemplar, in welchem er

keine Heterocysten fand. Die Arbeit von Allman scheint er über-

schen zu haben, sonst hätte er Kenntniss von Heterocysten haben

müssen. Fr. Ahlborn!?) beschreibt die Heterocysten, aber er kennt

sie als solche nicht. Klebahn hat Heterocysten mit Sporen an

demselben Faden in Präparaten aus dem Trent-See (Strodtmann)

gesehen und abgebildet.?°) Bornet und Flahault (l. c. p. 241),

Kirchner?!) und Hansgirg?°?) schreiben intercalare Heterocysten

Aphanizomenon zu.

Unter No. 745B der Phykoth. univers. habe ich A. flos aquae

ohne reife Sporen, aber mit schön entwickelten Heterocysten aus-

gegeben, von Herrn Landgerichtsrath Schmula aus einem Teich in

Königlich Neudorf bei Oppeln in Schlesien gesammelt. Sporen sind

hier nur vereinzelt in ganz jungem Zustande zu finden. Zur Nach-

untersuchung in der Phykothek eignet sich besser das auf Papier

dargebotene Material, als das auf Glimmer. Die Zugehörigkeit zu A.

flos aquae ist, trotzdem die Alge nicht in Lamellen auftrat, ausser

Zweifel. Ein besonderes Merkmal für A. flos aquae bilden kurze

intercalare Fadenstrecken, die aus Zellen mit getrübtem, unrein hell

spangrünem, aber homogenem Inhalt bestehen, aus Zellen, die ihre

Grenzwände nicht hervortreten lassen. Diese Fadenstrecken fanden

sich in dem Material von Schmula an Fäden mit Heterocysten vor.

ıNn.|. c. p. 195.

18) Giornale dal N. Giorn,. Botanico Italiano X. No. 3. 1878. p. 279.

1. c. p. 33.

20) Flora 1895. Heft 1. p. 31. des Sonderdruckes, t. IV. f. 30.

2!) Kryptogamenfl. v. Schlesien II. 1. p. 236.

®2) Prodromus d, Algenfl. v. Böhmen II. p. 73.

u Par Kugel * ut: Ze er RN ” a a nn. > 2 is iz ätln ala e

Beiträge zur Phykologie. 271

Allman bildet solche Fadenpartien (l. c. Pl. III. f. 8.) ab und

meint, dass sich hier mehrere Zellen vereinigen, um eine Spore zu

bilden. Ich bin dieser Meinung nicht, sondern halte sie für ab-

sterbende Zellen, die durch ihren Tod eine Theilung des Fadens

bewirken, resp. die Bildung von Hormogonien. Eine Resorption

der Grenzwände findet statt, bei Zusatz von verdünntem Alkohol

sieht man diese nur hie und da und nur schwach. Das unreine

Grün gleicht ganz dem der absterbenden Oscillatorien. Eine Theilung

habe ich direkt allerdings nicht beobachten können, aber ich sah

Fadenstücke mit solchen getrübten Strecken an den Enden. Dann

stimmen die Heterocysten auch überein mit denen von bestimmt

erkanntem Aphanizomenon mit Sporen. Die Heterocysten des

Schmula’schen Materials untersuchte ich in frischem Zustande. Durch

Färbung mit Anilinviolett erfährt man, ‘dass sie eine stark verquollene

Membran von etwa 0,5 u Dicke besitzen, die sich langsamer und

schwächer färbt als der Protoplast. Die Heterocysten des Alten-

burger Materiales, ges. im August 1884, also etwas alt, gaben nach

Aufweichung durch Milchsäure und Zusatz des erwähnten Färbmittels

zwar nicht mehr eine intensive Färbung, aber doch hob sich die

Quellungsschicht ab. Einen sicheren Nachweis will ich darin indess

nicht erblicken, da ich nicht weiss, ob dies Verhalten Aphanizomenon

eigenthümlich ist und sich nicht auch bei anderen Nostochineen

vorfindet.

Die Heterocysten sind in dem Material von Schmula langoval,

homogen nach Inhalt, glashell, mit einem Bläschen an jedem Pole

versehen, 4,2 u breit und bis 8 « lang. Sie brechen das Licht sehr

stark. Im getrockneten Zustande haben sie einen schwachen Stich in

Blaugrün angenommen.

In den Dimensionen stehen sie gegen das Altenburger Material

zurück, auch gegen die Angaben Bornet's und Flahault's, doch

stimmen sie mit denen von Klebahn bezüglich der Dicke und

erreichen die untere Grenze der Länge. Die vegetativen Glieder

haben eine Dicke von 3- 4 u und sind so lang, oder ziemlich um

das Doppelte länger, übereinstimmend mit Klebahn’schen Dimensionen,

abweichend von denen von Bornet und Flahault. Eine weitere

Uebereinstimmung finde ich in dem zerklüfteten Inhalt der älteren

Zellen, der in meinem unterverbesserten Mikroskop wie mit röthlichen

Körnern und Bälkchen erfüllt erscheint (nach Klebahn Gasvacuolen).

An einzelnen Fadenpartien war der Inhalt homogen, ohne rothe |

Körner, während andere Zellen desselben Fadens diese zeigten. Ich ;

halte diese Fadenpartien für jüngere Glieder, und die Fäden mit

durchaus homogenen Zellen für jüngere. — Aus Allem geht hervor,

dass A. flos aquae frei und in Bündeln vorkommt in 4facher Form:

1. mit Sporen und Heterocysten, 2. nur mit Sporen und ohne Hete-

272 Paul Richter.

rocysten, 3. nur mit Heterocysten ?*) und ohne Sporen (die Fälle 2 und 3

in Uebereinstimmung mit Allman) und 4. ohne Sporen und Hete-

rocysten, welch letztere sterile Form im aufgelösten Zustande Gomont

als Oscillatoria Agardhii beschrieben hat.*!)

Magnus °°) vermuthet in den sterilen Fäden unserer Alge, die er

in Bündeln im Eise fand, Jugendzustände, dem an sich nicht zu

widersprechen ist, doch lässt hier der sterile Zustand auch eine andere

Deutung zu. Ihm lag Material vor vom Ende einer Generation, da

hätten sporentragende Fäden mit vorkommen können, die er trotz

eifrigen Suchens nicht fand. Durch die Freundlichkeit Herrn P.

Hennings’ empfing ich dieses eingefroren gewesene Material, auch

ich fand Alles nur steril. Das führt zu der Annahme, dass Generations-

reihen hindurch Sporen und Heterocysten gänzlich fehlen können

und dass beider Auftreten an Bedingungen geknüpft ist, die wir nicht

kennen. Kützing?) hat den sterilen Zustand als besondere Varietät

aufgefasst (Limnochlide flos aquae var. y Harveyana), welche mit

Recht nicht anerkannt worden ist, denn man findet fertile und sterile

Fäden oft durcheinander, wie es auch der Fall war bei dem authen-

tischen Exemplar (Ösecillatoria flos aquae Ag.), das ich durch die

Güte des Herrn Dr. OÖ. Nordstedt aus C. Aghardh’s Herbar erhielt.

l:s waren hier Fäden mit Heterocysten neben Sporen vorhanden,

darunter auch sterile.

Mir liegt nun ob, den Nachweis zu führen, dass Osc. Agardhii

identisch mit der sterilen Form von Aphanizomenon ist und daher

aufzuheben sein würde. Allerdings habe ich in No. 593 A u. B der

Phykotheka univ. Osc. Agardhii ausgegeben, doch bewog mich dazu

der Umstand, dass ich durch Professor Schmitz authentische, von

Gomont bestimmte, von Holtz bei Greifswald gesammelte Exemplare

genannter Species empfing, durch welche ich dieselbe überhaupt erst

kennen lernte. Unter 593 B der Phykoth. univ. gab ich eine von Frau

A. Weber-van Bosse in Amsterdam eingesandte Aufsammlung, die

mit der Schmitz-Holtz'schen Alge identisch war, unter dem Gomont’-

schen Namen aus, obschon ich dieselbe schon als Aphanizom. flos aquaein

meine Liste eingetragen hatte. Ich gab damit meine frühere Auffassung

auf, kehrte jedoch zu ihr wieder zurück, als ich im Herbste vorigen

Jahres von den Herren Schmula und B. Fuchs in einem stehenden

) Schmula hat den Standort von No. 745B in Königlich Neudorf wiederholt

aufgesucht, um die Weiterentwickelung, namentlich die Bildung reifer Sporen

zu finden, allein umsonst, die Wasserblüthe war bald zu Grunde gegangen.

*) Monographie des Oscillarices p. 225.

») Magnus, das Auftreten von Aphanizomenon flos aquae (L.) Ralfs im Eise

bei Berlin. Berichte der deutsch. bot. Gesellsch. Bd. I. p. 129-132,

°%) Kützing Spec. algar. p. 286. — Tab. phycol. p. 49. t. 91. II. 7.

Beiträge zur Phykologie. 273

Gewässer zwischen Boguschütz und Zlönitz gesammeltes Material ?*)

frisch zur Untersuchung erhielt, welches man sowohl für Osc. Agardhii,

als auch für Aphanizomenon halten konnte. Ich entschied mich für

letzteres, da Herr Schmula mir brieflich mittheilte, es hätten sich in

den grossen Sammelgefässen vorübergehend Flöckchen gebildet. Die

Fäden des Oppelner Materials verhielten sich dem des Greifswalder

bis auf geringe Unterschiede in den Dimensionen ganz gleich. Die

dickeren Glieder (6,5 u) des letzteren sind durchweg kürzer als die

dünneren (4,5 «) des ersteren, doch passen all diese Maasse in die

Diagnose von Aphan. flos aquae. In beiden Aufsammlungen kommen

die für Aphanizomenon charakteristischen schon erwähnten Zellen

mit hellgelbem, getrübtem Inhalt vor. Gomont erwähnt sie auch in

der Diagnose für Osc. Agardhii, wo es heisst: „articuli subquadrati

vel diametro fere ad duplo breviores, 2,5 u ad 3,5 «a longi, saepe

protoplasmate refringente, grosse granuloso farcti.“ Kine

Calyptra,?®) die Osc. Agardhii zugeschrieben wird, habe ich an

authentischen Exemplaren Gomont’s (No. 593 A) nicht finden können.

Sie ist eine Täuschung; in der Regel ist die Endzelle inhaltsarm oder

der Inhalt steht von der Membran etwas zurück, so dass der Umriss

der Gipfelzelle etwas stärker sich abhebt und das umsomehr, wenn

sie zugleich auf dem Öbjektträger nach abwärts gerichtet ist.

Ösc. Agardhii ist Aphan. flos aquae steril und unverbunden.

In Anschluss hieran gebe ich die Diagnose einer neuen Species

von Aphanizomenon, gesammelt im Ende November 1895 in einem

Teiche zu Oldesloe in Holstein von Herrn Dr. Ch. Sonder, von

mir Aph. holsaticum genannt und in der Phykoth. univ. unter

No. 746 ausgegeben. Hier trage ich Diagnose und Bemerkungen nach.

Aphanizomenonholsaticum P. Richt. sp.nov. — A. laminulis natantibus

sigmodeis, rectis et curvatis; trichomatibus strictis, clasticis, aequalibus vel ad

apicem sensim attenuatıs; articulis granulosis ad genicula hinc atque inde

leviter constrictis, diametro omnino aequalibus vel paullum, autem duplo, triplo

longioribus; sporis cylindricis, elongatis, polis obtusis, diametroarticulorum

aequalibus, 5—7 plo longioribus, aetate medio modice tumidis, instructis pro-

toplasmatice granulis dilute aerugineis repleto;, episporio laevi hyalino distincto;

heterocystibus ignotis.

2?) Ausgegeben in Phykoth. univ. No. 745 A,

25) Bei den Species der Öscillarieen, denen Gomont eine Calyptra zuschreibt,

habe ich wohl ein solches Gebilde, wenn auch nicht so markant, wie es die

Abbildungen von Gomont zeigen, geschen, allein viel zu sehr zerstreut, als dass

ich die Ueberzeugung hätte gewinnen können, die Calyptra sei ein normales

Organ. Ihr specifischer Werth erscheint mir sehr untergeordnet, ja zweifelhaft.

Durch Ausscheidung der Calyptra als Merkmal für die Bestimmung erleidet die

in übriger Hinsicht werthvolle Arbeit Gomont's keine Beeinträchtigung, da die

Calyptra von ihm in dem Schlüssel nicht berücksichtigt worden ist.

Hedwigia Bd, XXXV. 1896. 18

274 Paul Richter.

Lat. articul,. 6—8 (ad apicem productum 3) «; long, artic. 8—8,5 (ad apic.

product. 9—12) «; lat. spor. 7—8 u, long. sp. 35—60 u.

Holsatiae in piscina ad „Oldesloe“ leg. Dr. Chr. Sonder,

Einfache Flöckchen sind 1-——2 mm lang, zusammengesetzte 3—5,

stumpf oder spitzlich, strich- und kommaförmig. Frisch war denselben

eine gelbliche Färbung eigen, die beim Trocknen in der Wärme in Grün

überging, wie mir Herr Dr. Chr. Sonder mittheilte. Dieselbe Angabe

finden wir von Auerswald für A. flos aquae var, fusca in Rabenh.

Algen No. 410.

A. holsaticum unterscheidet sich von A. flos aquae durch seine

| Sporen, die, abgesehen von der schr geringen Schwellung in der

| Mitte zur Reifezeit, den Gliedern an Dicke gleich sind und grössere

Ballen bis zu 3 x Durchmesser enthalten, während letzterer Art Sporen

bis um ein Drittel dicker sind als die Glieder und feinkörnigen

| Inhalt zeigen. Auf das Fehlen der Heterocysten ist kein Gewicht

| zu legen, ihr Vorkommen ist bei dieser Gattung nicht konstant.

DE a a ei a Me Be

er =

f Es erscheint mir nicht vortheilhaft, den Heterocysten einen

so hohen systematischen Werth beizumessen, dass nach ihrem

Vorhandensein oder Fehlen die Nostocaceen im erweiterten Sinn als

N. heterocysteae und N. homocysteae unterschieden werden könnten,

wie das von Hansgirg, Bornet und Flahault angebahnt wurde,

| Wir erhalten mit dieser Eintheilung zwei künstliche Gruppen, wobei

vielfach mit Ausnahmen zu rechnen ist, was zur Unbequemlichkeit

führt, wobei ferner verwandte Gattungen, wie Scytonema und Lyngbya,

zu weit getrennt werden und das phylogenetische Moment weniger

| zur Geltung kommt. Das zeigt sich bei Scytonema und Plectonema,

welch letzteres in dem Umfange nach Gomont's Monographie des

Oscillarices p. 117 zudem auch als eine künstliche Gattung betrachtet

werden muss, insofern als sich Typen von Scytonema, Lyngbya,

Tolypothrix, Glaucothrix hier vereinigt finden. Es gilt auch für Scyto-

nema und Tolypothrix, dass, wie bei Aphanizomenon, die Hetero-

cysten unter Umständen fehlen können. Wenn das _ feststeht,

dann liegt für mich kein Grund an der Aufrechthaltung der Gattung

Plectonema vor. Scytonema cincinnatum Thuret kommt mit und

ohne Heterocysten vor, dann kann es nur angemessen erscheinen,

wenn wir Plectonema 'Tomasinianum Bornet als besondere Species

zu Scytonema stellen, und die Diagnose dieser Gattung dem-

gemäss erweitern. Calothrix Tomasiniana Kütz.,?”®) nach Bornet ?®)

und Thuret identisch mit Plectonema mirabile Thuret, jetzt synonym

mit Plect. Tomasinianum Bornet,®!) habe ich in einem Original-

®) Tab. phycol, II. t. 30. f. IH.

%) Not. algolog, Fasc. II. p. 138.

3) Gomont |. c. p. 119.

a ni in a Zain ur

Beiträge zur Phykologie. 275

exemplare (Kützing Dec. XIII. No. 130) untersucht und in einem

Falle eine Heterocyste gefunden. Daraus soll nicht gefolgert werden,

dass Bornet nicht genau untersucht habe, sondern nur, dass das

Fehlen der Heterocysten hier eben nicht Regel ist. Kützing bildet

die Species ohne Heterocysten ab. Derselbe Schluss ist zu ziehen

im umgekehrten Falle mit dem zu Pl. Tomasianum gerechneten

Calothrix Brebissonii Kütz., welche Species Kützing |. c. f. IV.

mit einer Heterocyste abbildet, während Gomont bei Untersuchung

eines authentischen Exemplares aus dem Herbar Thuret keine

antraf. Plectonema Wollei Farlow ist die ursprüngliche Stellung

unter Lyngbya wieder zu geben als Lyngbya Wollei Farlow

(Rabenh. Alg. No. 2440). Ich habe No. 2440 untersucht und nur

spärliche Scheinverzweigungen gefunden. Unter Umständen hat

Lyngbya aestuarii auch Scheinverzweigungen, wollte man daher

consequent verfahren, so müsste letztere pr. p. Plectonema werden.

Plectonema radiosum Gomont habe ich nach dem Öriginal-

exemplar in Rabenh. Alg. No. 1305 untersucht und keine Hetero-

cysten gefunden, aber Verzweigungen. Nach dem von mir aufge-

stellten Gesichtspunkte, nach Beschaffenheit der Zellen und Scheide,

gehört es zu Tolypothrix. — Die folgenden dünnfädigen Plectonema-

species gehören dem Typus von Glaucothrix an, es sind hier keine

Heterocysten zu erwarten. Unter diesen ist meine Hypheothrix

roseola, ?) die ich jetzt als identisch mit Glaucothrix gracillima

Zopf betrachte. Die übrigen Species: Pl. tenue Thur., Pl. purpureum

Gom., Pl. terebrans Born. et Flah. kenne ich nicht nach Exemplaren,

den Abbildungen zufolge könnten sie bei Glaucothrix untergebracht

werden.

An Stelle der Eintheilung der Nostocaceae in Heterocysteae und

Homocysteae würde meines Erachtens nach die von Thuret und Bornet

(Ann. des. sc. nat. 6. ser. vol. 1, Enumeratio generum Nostichinearum

pp. 372— 82) gegebene zu gebrauchen sein, die Eintheilung in Psilo-

nemeae und Trichophoreae. Im Besonderen würden sich noch

Aenderungen nöthig machen, aber die beiden Hauptgruppen ent-

sprechen dem phylogenetischen Aufbau in annähernder Weise.

®2) Hedwigia 1879. p. 97.

18*

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Fungi Brasilienses

lecti a cl. Dr. Alfredo Möller.

Descripsit Ab. J. Bresadola.

Clarus Mycologus Dr. Alf. Möller, e ditissima Mycetum collectione

annis 1891-94 in provincia St. Catharinae Brasiliae facta, tria jam

praeclara edidit opera.') Insuper egregius P. Hennings, regii Musei

bot. berolinensis Custos, Uredincas et Ustilagincas Möllerianas curavit.°)

Sed plura adhuc inedita adsunt specimina. Horum pars, praecipne

quae annis 1891-—-92 lecta, a cl. P. Hennings mihi determinanda

tradita fuit. Ista ergo, quatenus determinationi obnoxia, materiam

hujus recensionis praebet; nam specimina nonnulla nimium manca

inveni, alia nigrificata ex eo quod in alcohole aliquo tempore asser-

vata sunt. Cl. Collector, qui specimina harum quoque specierum

adhuc tenet, poterit et istas determinare. Interea ego, quae mihi

clare patuit, in sequentibus depromam.

Tridenti, Kalendis Aprilibus 1896.

Hymenomyceteae Fr.

Lepiota Fr.

1. Lepiota molybdites Meyer Essequ. p. 300. Fr. Hym.

Europ. p. 30. Sacc. Syll. V. p. 30.

Hab. ad terram »Blumenau« Brasiliae (n. 52b).

Obs. Pileus in specimine observato 19 cm latus, cute in squamulis

minutis diffracta; stipes fusco-niger, minute furfuraceus, 25 cm longus,

apice 3 mm, basi 1 cm crassus; sporae obovatae, chlorino hyalinae,

15—17 = 9 u

Pleurotus Fr.

2. Pleurotus aggregatus Bres. n. sp.

Sessilis; pileo e resupinato reflexo, dimidiato, membranaceo,

luteo, glabro 11, —3 mm lato,; lamellis ventricosis, crassiusculis, acie

1) Dr. A.Möller: Die Pilzgärten einiger südamerikanischer Ameisen. Jena 1893.

— Brasilische Pilzblumen. Jena 1895.

— Protobasidiomyceten. Jena 1895.

2) P. Hennings: Fungi Blumenaviense, lecti a cl. Dr. Möller in Hedwigia,

Band XXXIV. 1895,

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 277

acuta, distantibus, postice rotondato-attenuatis, concoloribus; sporis

hyalinis, subglobosis, 6—7 — 5 u; basidiis clavatis, 30 — 6—8 u.

Hab. ad ligna dense gregarius »Blumenau« Brasiliae (n. 27c).

Cantharellus Adans.

3. Cantharellus fuscipes PDres. n. sp.

Pileuo subreniformi e convexo depresso, glabro, membranaceo,

pellucide striato, lutescente, 3—5 mm lato; lamellis paucis, 6—S,

distantibus, venoso-conjunctis, adnato-subdecurrentibus vel sub-

rotundato-adnatis, acie obtusa, concoloribus, stipite excentrico,

deorsum fuscidulo, pruinato, 2 mm longo, ", mm crasso, curvato;

sporis subellipticis, luteolis, 8—11 — 5—6., basidiis clavatis,

25—30 = 7—8 u.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller n. 24a).

Marasmius Fr.

4, Marasmius rubricosus Mont. Guy. n. 304. Syll. Crypt.

n. 429. Sacc. Syll. V. p. 508.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae.,

Obs. Sporae hyalinae, subeylindraceae, 10 = 3", u. Videtur

valde Marasmio cohaerenti Fr. (sub Mycena) proximus.

5. Marasmius epodius Bres. Fungi Trident. p. 88. tab. 98.

Hab. ad folia »Blumenau« Brasilia (n. 475).

Obs. Specimina americana cum speciminibus tridentinis optime

concordat; spora tantun 20 „ longa, nec usque ad 28 sese protenditur,

Lentinus Fr.

6. Lentinus pergameneus Lev. Champ. Mus. p. 117. Sacc.

Syll. V. p. 600.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 5 g).

Obs. Forma hic exhibita caespitosa, stipitibus basi tuberculoso-

coalitis. Sporae hyalinae, cylindraceae, subcurvulae, 61,71, =

2— 213 a. — Uti jam alıter monui, Lent. leucochrous et Lent.

cladopus minime specifice distinguuntur.

7. Lentinus Berterii Fr. El. p. 46. Epicr. p. 388. Sacc. Syll. V.

p. 572.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (sine n.).

8. Lentinus tener Klotzsch in Fr. Epier. p. 389. Berk. Trans,

Eu Soc Vol. XX. p. 110 tab. IX, f. 2. Sacc.SylL-Y. p. 376,

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 15e).

Panus Fr.

9. Panus rudis Fr. Epier. p. 398. Agaricus hirtus Secr.

n. 1073. Ag. Swainzonii Demid. Vog. p. 85. t.1.f.3. Panus

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Ab. J. Bresadola.

Hoffmani Fr. in Hofim. Ic. an. t. 22. f. 1. Panus hirtus Quel. Fl.

Myc. p. 325. Lentinus Lecomtei Fr, Epier. p. 388!

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 5h).

Obs. Specimina brasiliensia cum tridentinis ad unguem con-

cordant. Pileo coriaceo-lento, cyathiforme vel dimidiato, alutaceo-

ochraceo, margine lilacino, dein toto unicolori, sicco ochraceo-

cervino, pilis fasciculatis hirto, 3--6 cm lato; lamellis confertis,

decurrentibus e lilacinis ligneo-pallidis, acie integra vel sub lente

Nocculosa; stipes solidus, centralis vel excentricus aut lateralis, saepe

obsoletus e lilacino ochraceo-luridus, hirtus; caro alba, sporae hyalinae,

obovato-oblongae, 6—8 = 3", .ı, basidia clavata, 35—40 — 6-—7 u,

Nomen Pani hirti (Seer.) Quel. anterius (1833) non adoptamus,

quiajam altera specie a Friesio condita, anno 1830, sub hoc nomine

existit.

Schizophyllum Fr.

10. Schizophyllum commune Fr, Syst. Myc. I. p. 333.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 27 b).

Pluteus Fr.

11. Pluteu$ cervinus Schaeff. Bar. tab. 10.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 46b).

Crepidotus Fr.

12. Crepidotus condensus Bres. n, sp.

Pusillus; pileo tenui e resupinato reflexo, convexo, postice adnato

et villoso, striato-sulcato, margine crenulato, 2--4 mm lato; lamellis

valde distantibus, ventricosis, postice sinuato adnexis, stipite excen-

trico, curvato, 1--2 mm, basi villosulo, pileo connato; sporis globosis

luteolis 5—6 «u diam.

Hab. ad cortices dense scalari disseminatus »Blumenau« (n. 27e).

Obs. Species haec in alcohole missa fuit, et pronti fere species

omnes, tali modo asservatae, colore lurido alutaceo gaudet; an vero

et nativus sit non constat, quia collector de hoc non facit sermo,

Psalliota Fr.

13. Psalliota campestris Linn. Suec. n. 1205. Fr. Syst.

Myc. p. 281. Hym. Europ. p. 279. Sacc. Syll. V. p. 997.

Hab. ad terram »Blumenau« Brasiliae (n. 24f).

Paneolus Fr.

14. Paneolus sphinctrinus Fr. Epicr. p. 235. Hym. Europ.

p. 311. Sacc. Syli. V, p. 1121.

Hab, in fimo »Blumenau« Brasiliae (n. 34.d).

al nass = ut ZZ Zn a mi Hals u m on. a a une a

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 279

Obs. Sporae fuscae, 15—20 = 12—13 u. A Paneolo cam-

panulato Linn. vix specifice distinctus, et tantum ut ejus forma

gracilior considerandus.

Coprinus Pers.

15. Coprinus torquatus Mont. Cent, VII. p. 29. Sacc. Syll.

V.p. 1116.

Hab. ad ligna »Blumenau« Prasiliae (sine n.).

Sporae obovatae, sursum truncatae, fuscae, 7—8 =4 u. Stipes

basi bulbillo cavo, in sicco patellari-collapso, fibrillis albis circulariter

radiato, praeditus.

Polyporus Mich.

16. Polyporus lentus Berk. Outl. p. 237. t. 16. f. 1.

Hab. ad truncos, »Blumenau« Brasiliae (n. 199).

Obs. Sporae hyal. cylindraceo-subeurvulae, 8-9 = 3-31, 1,

hyphae subhym. 3 .. latae.

17. Polyporus virgatus Berk. et C. Journ. Linn. Soc. X.

p. 304. Sacc. Syll. VI. p. 66.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 241).

18. Polyporus flexipes Fr. Epier. p. 432. Sacc. Syll. VI.

p. 69.

Hab. in truncis »Blumenau« Brasiliae (n. 5b). Spora 6-7 — 2 u.

19. Polyporus Blanchetianus Berk. et Mont. Cent. VI.

n. 64. Sacc. Syll. VI. p. 87.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 144).

20. Polyporus vernicosus Berk. in Hook. Journ. 1856. p. 175.

Saee.'l. c.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 956.).

21. Polyporus gilvus Schw. Carol. n. 897. Sace. Syll. 1. c.

p. 121.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 49c.).

22. Polyporus crispus (Pers.) Fr. Syst. Myc. I. p. 363.

Hab. ad truncos, »Blumenau« Brasiliae (n. 237).

23. Polyporus Auberianus Mont. Cuba t. XVL. f. 1. Sacc.

Syll. 1. c. p. 145.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 222, forma resupinata).

24. Polyporus cubensis Mont. Cent. I. n. 52. Bace. 1.0;

p. 146.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 39g).

25. Polyporus plebejus Berk. H. New. Zel. II. p. 179,

Sace. 1. c. p. 147.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 280, 293, 637).

a ET

280 Ab. ]J. Bresadola.

Ganoderma Karsten,

26. Ganoderma renidens Bres. n. sp.

Pileo suberoso-sublignoso, flabelliformi vel reniformi, rugoso, €

flavo sanguineo-castaneo, nitido, laccato, 3—-8 cm lato; stipite laterali,

nitido, laccato, e flavo-fulvo-badio, radicato; poris subhexagonis, mediis,

pallidis; tubulis umbrinis; contexto cinnamomeo; sporis subglobosis,

asperulis, luteis, 8-10 —8 u.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 305).

Obs. Habitu, colore etc. omnino Ganoderma lucidum refert,

a quo precipue sporis globosis distinguiter.

Fomes Fr.

27. Fomes Braunii Rabenh. in Fungi Europ. n. 2005. Sacc.

Syll. VI. p. 289. Polyporus Engelii Harz Bot. Centr. 1889. I.

p. 376! Sacc. Syll. IX. p. 188,

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 147).

28. Fomes fulvo-umbrinus Bres. n, sp.

Resupinatus; subiculo suberoso-lignoso, fulvo, valde effuso, ligno

arcte adhaerente; tubulis stratosis, longis, luteo-umbrinis; poris

minimis, subrotundis, ferrugineo - umbrinis; sporis luteis, elongato-

subellipticis, laevibus, 7 —4 u.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 438).

Polystictus Fr.

29. Polystictus fimbriatus Fr. in Linn. V. p. 520. Epicr.

p. 476! Polyporus Warmingii Berk. Fung. Glaz. p. 752. n. 9107!

Craterellus sparassoides Speg. Fung. Guar. Pars. I. p. 36.

Thelephora sparassoides Speg. in Balansa Fung. Par. exsicc.

n. 3352!

Hab. ad folia, ramenta lignea »Blumenau« Brasiliac (Hule).

Obs. Specimina authentica tam Polyp. fimbriati Fr., quam

P. Warmingii Berk. et Th. sparassoides Speg. vidi, at nullam

differentiam inveni.

30. Polystictus Mölleri Bres. n. sp.

Pileo coriaceo-papyrino, tenui, flabelliformi vel reniformi, sericeo,

subzonato, ex albo stramineo, 1",--4 cm lato; stipite laterali, brevi,

interdum obsoleto, pubescente, basi dilatato-adnato, albo, fuscescente,

2-—-7 mm longo, 3—4 mm crasso; tubulis brevissimis concoloribus;

poris minimis, punctiformibus, rotundatis, ex albo stramineis; hyphis

subhymenialibus 27, —4 u latae; sporae non visae,

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 139).

31. Polystictus stereinus B. et C. Journ. Linn. Soc. X.

p. 308.

Hab. ad truncos »Blumenau- Brasiliae (n. 103).

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. >81

32. Polystictus sanguineus (Linn.) Mey. Esseq. p. 304.

Sacc. Syll. I. c. p. 229.

Hab. ad truncos »St. Catharina« Brasiliae (n. 6a).

Obs. Forma hic exhibita jam obsoleta et fere ex integro dealbata.

33. Polystictus rigescens Cooke Grev. 1885. p. 12. Sacc.

l. c. p. 230. Henningsia geminella Möller Protob. p. 44.

Hab. ad truncos »St. Catharina« Brasiliae (n. 37d).

Obs. Cl. Dr. A. Möller in praeclaro suo opere |. c. ex hac specie

novum genus condidit ex eo quod prius pileus exeritur et dein

hymenium. Hic crescendi modus communis prorsus est apud fungos

pileatos. Praesertim si loco abscondito vegetant, ex. gr. in arboribus

cavis etc., pileos exerunt saepe duplo triplore majores quam ordi-

narios priusquam hymenium appareat; qua de causa genus hoc, meo

sensu, rationem existendi non habet.

34. Polystictus pinsitus Fr. El. p. 95. Polyporus umbo-

natus Fr. Nov. Symb. Myc. p. 87! Hexagonia Friesiana Speg.

Fung. Guar. Pug. I. p. 55!

Hab. ad truncos »St. Catharina« Brasiliae (n. 15d).

35. Polystictus Peradeniae Berk. et Br. Journ. Linn. Soc.

AIVED. 9%

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 328).

36. Polystictus versicolor (Linn.) Fr. Syst. Myc. I. p. 368.

Sacc. Syll. Il. c. p. 213.

Hab. ad ligna »St. Catharinas Brasiliae (n. 15b, 290).

Obs. Formae exoticae hujus speciei fere semper ad var. lutescen-

tem spectant; rarissima est forma nigro-fusca.

37. Polystietus sector (Ehrenb.) Fr. Epier. p. 480. Boletus

Ehrenb. Fungi Cham. p. 10. tab. 18. fig. 6.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 473).

385. Polystictus Drummondii Rlotz. in Fr. Epier. p. 481.

Hab. ad truncos »St. Catharina« Brasiliae (n. 308).

Obs. Species haec vegeta ex integro alba, postice longe resu-

pinato-producta, interdum ex integro resupinata. Sporae hyalinae,

subglobosae, 5—6 == 4—4!, u; hyphae subhymeniales 31, —4'/, u

latae, septatae.

39, Polystictus membranaceus (Swartz.) Berk. Fung. Brit.

Bus. D. 378, tab. X. fig. 7.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 209, 375).

Poria Pers.

40. Poria subspadicea Fr. Syst. Myc. I. p. 116. Sacc. Syll.

ec 82

Hab. ad ligna »Blumenau« Drasiliae (n. 239).

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282 Ab. J. Bresadola.

41. Poria Borbonica Pat. Journ. Botan. 1890. p. 198.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 37e, 338).

42. Poria umbrinella Bres, n. sp.

Late effusa; subiculo fere nullo; tubulis 5—8 mm longis, albo

farctis, umbrino-fuseis; poris minimis, subrotundis, luteo-umbrinis,

acie obtusa; sporis luteis, subglobosis, 3-4 = 3 u; hyphis subhyme-

nialibus luteis; 2— 3 u latis.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 804),

Obs. Habitu et colore cum formis resupinatis Polypori sali-

cini optime convenit, sed sporis diversus.

43. Poria Blyttii Fr. Hym. Europ. p.571. Pol. laevigatus

var. emollitus Fr. I. c.! Polyporus collabens Fr. I. c. p. 572!

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 39f, 238, 239).

Obs. Sporae hyalinae 4 = 2 u; cystidia clavata, 50—60 = 9—15 u;

hyphae subhymeniales 3--3Y, #1. — Forma americana a forma europea

differt modo subiculo crassiore, facile secedente.

44, Poria carneo-pallens Berk. in Hook. Journ. 1856. p. 237.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n, 5ld, 207).

45. Poria pavonina Pres. n. sp.

Late effusa, coriacea, adglutinata, vivide pavonina, expallens,

margine obsoleto, subiculo nullo,; tubulis brevibus, 1 mm longis; poris

parvis, subangulatis; hyphis subhymenialibus 2 «. —— Sporae non

visae.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 265).

Obs. Poriae carneo-pallenti B. proxima, sed colore, con-

sistentia et poris magis regularibus, distincta.

46. Poria graphica Bres. n. sp.

Late effusa tenuissima, lilacino-carnea, margine rubello, subiculo

nullo; tubulis vix ',; mm longis; poris elongatis, sinuosis, variis,

dissepimentibus tenuissimus praeditis; sporae non visae. Hyphae

subhymeniales 3 u latae.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliac (n. 317).

Obs. Speciesmemorabilis, delicata,cum nulla mihinotacamperanda.

47. Poria carneola Pres. n. sp.

late effusa, carnosa,; subiculo membranaceo, alutaceo-pallido,

margine tomentoso albo-lilacino; tubulis brevibus, interruptis, saepe

obliquis; poris mediis subrotundis vel angulatis, variantibus, luride

carneis, hinc inde lilacino-tinctis demumque carneo-pallentibus. Sporae

non visae, Hyphae subhymeniales 31/3—4 u,

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 284, 465).

a DE a Ben Sell un acer SEE En na A 2 im asien nn u nen en:

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 283

48. Poria vincta Berk. Fung. Doming. p. 5. n. 26.

Hab. ad ligna »Blumenau« Prasiliae (n. 274).

Forma nigrescens ibi (n. 208) hymenio demum nigrescente.

Obs. Species stratosa, stratis facile separabilibus.

49, Poria subvincta Berk. et Br. Journ. Linn. Soc. XIV. p. 54.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 145).

50. Poria medulla panis Pers. (non Fr.) Syn. p. 544!

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 203).

Obs. Sporae subglobosae, apice truncatae, 6—= 4-5 «u, hyphae

2 u latae.

51. Poria sarawacensis Berk. in Ces. Myc. Born. p. 7.

Hab. ad ligena »Blumenau« Brasiliae (n. 359).

Obs. Sporae hyalinae, subglobosae, 4-5 = 4 ı.

52. Poria Lindbladii Berk. North Amer. Fungi n. 146.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 286).

53. Poria radula Pers. Observ. 2. p. 14.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 827).

Obs. Sporae obovatae, hyalinae, 4—5 = 3 «; hyphae subhym.

3—4 1 u.

54. Poria undata Pers. Myc. Europ. p. 90. t. 16. f.3! Poly-

porus Broomei Rabenh. in Fungi Europ. n. 2004! Polyporus

cinctus Berk. Outl. p. 250!

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 296, 298).

Obs. Sporae subglobosae, hyalinae, 4—-5 — 4 u; hyphae subhym.

conglutinatae 3—5 « latac. Forma brasiliensis tenuior, magis laevigata

porisque aliquantulum minoribus; cetera concordat. Polyporus

cinctus Berk., prouti e comparatione speciminum originalium

mihi elicuit, cst forma subiculo margine fimbriato. Specimina

originalia persooniana in Museo leidensi asservata vidi, quae ad

unguem cum speciminibus Pol. Broomei concordant.

55. Poria Vaillantii Fr. Syst. Mxe. I. p. 383.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 478, 757).

Obs. Specimina sterilia inveni; de cetero cum speciminibus

europeis plane concordant.

56. Poria favillacea Berk. et C. North Am. Fungi n. 141.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 364).

Obs. WVidetur forma resupinata Polypori crispi (Pers.) Fr.

Specimina sterilia inveni, ideoque nil certi asserere possum.

57. Poria Salleana Berk. Grev. XV. p. 25.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 269).

58. Poria Fuligo Berk. et Br. Journ. Linn. Soc. XIV. p. 53,

Hab. ad truncos »St. Catharina« Brasiliae (n. 44c).

284 Ab. J. Bresadola.

Trametes Fr.

59. Trametes sericeo-hirsuta (Klotz.) Btes. Polyp. seri-

ceo-hirsutus Rlotzsch Linn. VII. p. 483! Hexagonia sericea

Fr. Epier. p. 497. Polyporus Drummondii Speg. Fung. Guar. I.

p. 21! (non Klotz.). Polystictus Spegazzini Bres. in Sacc.

Syll. XI. p. 92.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (sine n.).

Obs. Species haec, ab Hexagonicis typicis valde diversa,

Trameti lutescenti (Pers.) Bres. (= Trametes hispida Bagl.)

affınis est, prope quam in systema locanda.

60. Trametes fibrosa Fr. Epier. p. 490,

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 42c).

61. Trametes serpens Fr. Hym. Europ. p. 586. Trametes

bombyeina Quel Flor. Myc. p. 371 (non P. bombycinus Fr.).

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 672).

* T. Stephensii Berk. et Br. Ann. Hist. n. 356.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 108),

Obs. Haec varietas structura compatiore, poris magis regularibus,

hyphis strictioribus a typo distinguitur et forsan ut species propria

habenda.

Favolus Ir.

62. Favolus brasiliensis Fr. El. I. p. 44. Linn. V. p. 541.

t. 11 f. 1. Epier. p. 498. Sacc. Syll. VI. p. 394.

Hab. ad ligna Brasiliae (Dr. Möller 1890 n. 5c).

63. Favolus subpulverulentus Berk. et C.Cuban Fungi n. 198.

Sacc. Syll. VI. p. 397.

Hab, ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 17d).

Obs. Basidia clavata, 20—25 = 41, — 5!) u; sporae hyalinae

subglobosae, 2—3 = 1! u.

Gleoporus Mont.

64. Gleoporus conchoides Mont. Cuba p. 385. tab. 15 £. 1.

Syll. Cryp. n. 561. Sacc. Syll. VI. p. 403. Auricularia reticulata

Fr. Epier. p. 555.

Hab. ad ligna Brasilia, 1890 (Dr. Möller n. 15c, 309).

Species haec arcte cum Polyporo dichroo et Pol. amorpho

affınitate conjungitur, a quibus vix distinguitur. Hymenium enim

prorsus idem, sc. tremellino-gelatinosum; etiam sporae plane aequales,

ceylindricaeae, curvulae, biguttulatae, 3—5 — 1—1'/, «. Prouti jam

Cl. cl. Berkeley et Cooke monu£re forte tantum status junior

Polypori nigro-purpurascentis Schw., qui ceu forma exotica

Polypori dichroi Fr. considerandus est.

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Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 285

Laschia Fr. emend.

65. Laschia agaricina (Mont.) Pat. Journ. Bot. 1887. p. 228.

Sacc. Syll. VI. p. 404. Exidia agaricina Mont. Fl. Chil. VII.

D.921 »26 12

Hab. ad ramenta lignea »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller n. 41 c).

Obs. Basidia clavata, 25—30 = 6 u; sporac hyalinae, ellypticae,

78 = 3—4 u.

66. Laschia Mölleri Bres. n. sp.

Sessilis et stipitata; pileo orbiculari vel reniformi, glabro, pellu-

cide alveolato, albo, 4—8 mm lato; stipite laterali, concolore usque

ad 4 mm longo, 1 mm circiter crasso, pellucido, glabro; alveolis

obovatis, hexagonis, majusculis, 1—1'/; mm. albis; sporis subglobosis,

hyalinis, 6—-9 = 6—8 u; basidiis clavatis, 20 —25 = 5—6 u; cellulis

pilei granuloso-asperulis, 16—18 — 14 u, ellipsoideis.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller n. 32 b).

67. Laschia flava Bres. n. sp.

Pileo subreniformi, pellucide alveolato, sub lente pruinato, vivide

flavo, 2—3 mm lato; stipite laterali, filiformi, 2—3 mm longo, conco-

lore, pruinato; alveolis parvis, rotundato-angulatis, dissepimentis

crassiusculis, concoloribus; sporis ellipsoideis, 7—8 = 4—4!h u;

basidiis clavatis, 20—24 —= 6 u; cellulis pilei clavato-stipitatis, apice

echinulatis, 15—20 = 12—14 u.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller n. 27 d et 32 c).

68. Laschia rubra Bres. n. sp.

Pileo subreniformi vel suborbiculari, pellucide alveolato, glabro,

laete rubro, 1—2 mm lato; stipite laterali vel excentrico, concolore,

glabro, pellucido, 113—3 mm longo, ",—1 u crasso, alveolis hexa-

gonis, parvis, concoloribus, dissepimentis crassiusculis; sporis sub-

globosis, 8—10 = 7—8 u; basidiis clavatis, 20—25 = 5-6 u;

cellulis pilei ellipticis, glabris, 12—14 —= 8-9 u, polygonalibus.

Hab. ad cortices arborum »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller

m o2oN

Obs. A Laschia auriscalpium Mont., cui simillima, praecipue

alveolis quadruplo minoribus distincta.

Merulius Hall.

69. Merulius Mölleri Bres. et Henn. n. sp.

Pileo membranaceo-molli, sessili, valde postice resupinato-pro-

ducto, albo, tomentoso-floccoso, 2—4 cm lato, saepe aliis connato,

concentrice sulcato, margine repando-lobato; hymenio plicis reticulatis,

subporosis praedito, aurantio-carneo vel vinoso, fuscescente; sporis

hyalinis, globosis, nucleo fulvo, 3 « diam.; basidiis clavatis, 25 —4—5 u;

hyphis subhymenialibus 4—4!/, u latis.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 110).

a Fi a u de u Ba

De a #4

Ab. J. Bresadola.

Obs. Habitus prorsus Merulii tremellosi Schrad., at sub-

stantia molli, membranacea, forma sporarum etc. satis superque

distinctus.

Solenia lloffm.

70. Solenia endophila (Ces.) Fr. Hym. Europ. p. 705.

Sacc. Syll. VI. p. 427. Cyphella endophila Ces. in Rabenh.

Fungi europ. exsiec. XVI. n. 1513!

Hab. in caulibus herbarum »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller

n. 29).

Obs. Specimina brasiliana omnino cum speeiminibus europaeis

l. ce. editis concordant.

Hydnum Linn.

71. Hydnum rawakense Pers. in Freyc. Voy. ex Fr. Epier.

p. 515.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliae (n. 501).

Odontia l’ers.

72. Odontia pyramidata Berk. et Curt. Fungi of Ceyl. n. 352,

Sacc. Syll. VI. p. 475.

Hab. ad ligna »St. Catharina« Brasiliac n. 13a.

73. Odontia artocreas Berk. in Massce Journ. of Bot. 1892,

p. 163. Sacc. Syll. XI. p. 108.

Hab. ad ligna Blumenau Brasiliae (n. Ill et 330).

74. Odontia fragilissima Berk. et Curt. North Amer. Fungi

n. 198. Sacc, Syll. VI. p. 475.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 176).

75. Odontia farinacea Pers. Syn. p. 562 (non Fr.).

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 23b, 404).

Obs. n. 23b refert formam typicam, sporis globosis, asperulis,

3 « diam. subiculo prorsus farinaceo; n. 404 praebet formam diver-

gentem subiculo magis compacto, aculeis aliquantulum longioribus

et sporis 3/92", u, forte specifice distinguendam, at specimen parum

characteristicum ut ad interim distinguam.

76. Odontia cinnamomea Mont Fl. Chil. VI. p. 373.

Sacc, Syll. VI. p. 509.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 508).

77. Odontia flavo-argillacea Bres. n. sp.

Late effusa, crustaceo-ceracea, e flavo avellanea, mycelio albo in

corticem reptante, margine pruinato, arcte matrici adnata; dentibus

papilliformibus, crassiusculis, subdistantibus, concoloribus, apice albo-

fimbriatis. Sporae non visae.,

Hab. ad cortices arborum »St. Catharina« Brasiliae (n. 297).

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller, 287

Irpex Fr.

78. Irpex portoricensis (Fr.) Bres. Polypororus portori-

censis Fr. El. I. p. 115. Irpex griseo-fuscus Mont. Guy.

n. 398. Irpex coriaceus Berk. et Rav. North Amer. Fung. p. 101.

Hydnum trachyodon Lev. Ann. Sc. Nat. 1846. V. 5. p. 302.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasilia (n. 623) — forma resupinata.

Hydnochaete Bres. n. gen.

Receptaculum resupinatum, suberoso-coriaceum; hymenium acu-

leato-dentatum, aculeis subulatis, fulvis, praeditum. Basidia tetraspora.

Sporae hyalinae — Generi Asterodon Pat. proximum, a quo prac-

cipue differt receptaculo cystidiis stellatis haud farcto.

79. Hydnochaete badia Bres. n. sp.

Late effusa, arcte adnata, subiculo crasso, 2—3 mm, suberoso-

coriaceo, fulvo-umbrino, hymenio varie configurato, aculeato, dentato,

vel tuberculoso, castaneo-badio, ubique setulis consperso; setulis

fulvis, 45—75 = 9 u simplicibus; basidiis clavatis 15—20 = 5-6 u;

sporis stramineis, ellipticis 5 = 3 u.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 211, 268, 801).

Obs. Sub tribus formis observata; prima (n. 211) perfecte

hydnoidea, aculeis subulatis; secunda (n. 268) raduloidea, tuberculis

teretibus crassiusculis, elongatis; tertia (n. 801) irpicoidea, dentibus

basi favosa junctis. — Habitu externo forma iripicoidea facile pro

Irpice portoricensi haberi potest, qui mox dignoscitur defectu

'setularum.

Radulum Fr.

80. Radulum umbrinum Bres. n. sp.

Latissime effusum; subiculo membranaceo, secedente, alutaceo-

umbrino, margine fimbriato, mox similare; tuberculis distantibus, variis,

curtis vel elongatis, subconicis, saepe conglomerato-confluentibus,

carneo-fuscis, collabentibus; sporis stramineis, obovatis vel subglobosis,

3—31g — 2—21, u, hyphis subhymenialibus 4 « latis.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 262).

Obs. Habitu externo omnino refertt Radulum molare ers.

a quo differt tuberculis tenuioribus et sporis. In Radulo molare

Pers. sporae sunt hyalinae, ellipticae, 1—12 = 7—8 u,

Kneiffia Fr.

81. Kneiffia grisea Berk. et C. Fungi of Ceylon n. 366.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 44).

Obs. Species haec non genuina Koneiffia; cystidia prorsus.

Peniophorarum, a quibus hymenio rugoso-subporoideo tantum

differt.

288 Ab. J. Bresadola.

Cladoderris Pers.

82. Cladoderris crassa (Klotz.) Fr. Fungi Nat. p. 22.

Hab. in truncis »Blumenau« Brasiliae (n. 107).

Thelephora Ehrh.

83. Thelephora caperata Berk. et Mont. Cent. VI. n. 69.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 24c, 281).

84. Thelephora decolorans Berk. et ©. Cuban Fungi n. 374.

Hab. in truncis »Blumenau« Brasiliae (n. 315).

Obs. Sporae stramineae, ellipticae, 6—7 —= 41, —5 u; hyphae

subhymeniales septatae; tenuiter tunicatae, 5 . latae.

Stereum Pers.

85. Stereum elegans Mey. Ess. p. 305. Sacc. Syll. 1, c. p. 553.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 315).

Obs. Sporae hyalinae, nucleo chlorino, globosae, 4-5 u diam,

86. Stereum Mölleri Bres. et Henn. n. sp.

Pileo verticali, Nabelliforme, sericeo, nigro-fusco, margine albicante,

zonis concentricis, elevatis, praedito, 1—-2 cm lato; stipite concolore,

laterali, sericeo, 5-7 mm longo, 2 mm crasso, basi tuberoso-radicata,

interdum magis quam stipite longa,; hymenio pallido, laevi vel sub-

ruguloso,; basidiis clavatis, 15—20 — 5—6 u; sporis subglobosis,

3 — 21,—3 a hyalinıs, 1-guttulatis; hyphis subhymenialibus,

2—3 u latis.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 110).

Obs. Habitu, coloribus ete. omnino Hydnum graveolentum

Delastre refert.

87. Stereum fuscum (Schrad.) Quel. Thel. fusca Schrad. Spice.

p. 184. Stereum bicolor. l’ers. Syn. p. 568. Sacc. Syll. VI. p. 565.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 153).

Obs. Sporae hyalinae, subglobosae, biguttulatae, 4= 3 u;

cystidia clavato-fusoidea, septata 55 —65 = 10 — 12 «u; hyphae sub-

hymeniales septata, ad septa nodosae, 3—4 u lata.

88. Stereum roseo-carneum (Schw.) Fr. Symb. Mye. p. 112.

Thelephora Schw. Car. p. 81. Stereum Seveilleanum B. et C. Hook.

K. Misc. I, p. 238.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 44).

Obs. Cystidia fusoideo-ventricosa, 45-50 = 14-18 u; hyphae

subhymeniales luteolae, 3—-5 u latae.

89. Stereum papyrinum Mont. Cuba p. 374, Syll. .n. 587.

Sacc. Syll. VI. p. 621. Stereum paraguayense Speg. Fung.

Guar. pug. I. n. 75!

Hab. ad truncos St. Catharina (Blumenau) Brasiliae. Legit.

Dr. Möller n. 17a.

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Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 289

Obs. Specimen nostrum cum speciminibus authenticis a Cl. amico

N. Patouillard benevole communicatis exacte congruit, Hymenium

purpureo-umbrinum, cystidis rarissimis, clavatis, vel subfusoideis,

fulvis, primitus apice tunica alba, furfuracea, evanida, tectis, 30—35 —

10—14 .: praeditum.

90. Stereum induratum Berk. Challeng. Exp. n. 181 Sacc.

l. c. p. 585.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 223, 544, 584).

91. Stereum annosum Berk. et Br. Fung. of Ceyl. n. 600.

Sacc. l. c. pag. 586.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 329).

Hymenochaete Lev.

92. Hymenochaete formosaLev.var. frondosa Bıres.n. var,

Pileis plurimis alternatim vel verticillatim ex stipite communi

prodeuntibus, spatulatis, ad stipitem attenuato-stipitatis vel rarius

sessilibus, vaginantibus, ferrugineis, zonis badiis demum variegatis,

coriaceo-papyraceis, velutinis et setulis fulvis hirtellis, 1'/,—2 cm latis,

margine fimbriatis; hymenio laevi, concolore, setulis fulvis, uti in

pileo, 100— 180 = 9—15 u praedito; stipite communi tereti, basi

toruloso, 10—12 cm longo, 3—4 mm crasso, supra dimidium frondoso-

pileato, concolore, tomentosulo, setulis fulvis, ejusdem dimensionis

et formae, prouti in pileo hymenioque, hirto; sporae non visae.

Hab. ad terram »Blumenau« Brasiliae (n. 34 f).

93. Hymenochaete tenuissima Berk. Cub. Fungi n. 408.

Sacc. Il. c. p. 593.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 56)

Obs. Setulae 75—-135 = 9—15 u.

94. Hymenochaete Kunzei Hook. Bot. Misc. II, p. 163 tab. 85.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 288).

95. Hymenochaete fuliginosa Lev. Ann. Sc. Nat. Feb. 1846,

p..152,

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasilia (n. 565).

Obs. Setulae 36—45 =4- 5 u; Hyphae subhymeniales 3 u latae.

Species haec vix europea. Mihi saltem nunquam obvia, nec in

Herbariis, quos consulere potui inventa. Existimo quod Stereum

fuliginosum Pers. nil aliud sit quod Stereum spadiceum Pers.

(non Fr.) forma resupinata.

9%. Hymenochaete simulans (Berk. et Br.) Bres. Corti-

cium B. et Br. Ceylon Fung. n. 646.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 212).

Obs. Sporae luteolae, 7—8 — 4 u; setulae fulvae, 60-80 —6—7 u;

hyphae subhymeniales 2—-3 '/, u.

Hedwigia Bd, XXXV. 1896. 19

290 Ab. ]J. Bresadola,

Corticium Fr.

97. Corticium atratum Bres. n, sp.

Late effusum, adnatum, membranaceo-ceraceum, demum late

rimosum, sub lente pruinatum, ex atro murinum, ambitu similare;

sporis hyalinis, obovato-elongatis, 8S—10 — 4-5! u; hyphis sub-

hymenialibus conglutinatis, septato-nodulosis, 4—5 u latis.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 335, 717).

Obs. Species valde Corticio caeruleo affınis, a quo colore,

margine similari, substantia tenuiore et hyphis minus distinctis

diversa,

98. Corticium subochraceum Bires. n. sp.

Late effusum, tenue, subceraceum, adglutinatum, contiguum,

e luteo luride-ochraceum vel isabellinum, margine primitus albo-

subfimbriato, dein similari; sporis stramineis, ellipsoideis, 6—8 —

4—4', u, basidiis clavatis, 15—20 = 6.u,; hyphis subhymenialibus

conglutinatis, 3—5 u latis.

Hab. ad cortices arborum »Blumenau«s Brasiliae (n. 274).

Obs. Externa facie Corticium alutarium simulat, sed struc-

tura microscopica prorsus diversa.

99. Corticium interruptum Berk. Fungi Glaz. p. 752.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 484).

Obs. Sporae globosae, hyalinae, 5 « diam.; hyphae subhyme-

nialibus 3—4 u latae.

Peniophora Cooke.

100. Peniophora galochroa Bres. n. sp.

Late effusa, membranacea, ex alba cremicolor, ambitu primitus

subfimbriato, mox similari, demum rimosa interstitiis sericeis; sporis

hyalinis, ellipticis, D'/a—6'"g —= 4-4! u; basidiis clavatis, 30-35 —

4-5 u; cystidiis fusoideis, primus furfuraceo-tunicatis, 50-55 —

9—10 u, dein granuloso-asperulis, 5—6 u latis; hyphis subhyme-

nialibus 2'1/,—4 u latis.

Hab. ad ramos corticatos »Blumenau« Brasiliae (Möller n. 275)

et Rio de Janeiro (Glaziou n. 14426).

Obs. Aspectu externo Corticium Berkeleyi et Corticium

diminuens simulat, a quibus structura microscopica bene distincta.

Septobasidium Pat.

101. Septobasidium velutinum Pat. Journal de Botan.

Ferr. 1892. p. 63.

Hab. ad ramos »Blumenau« Brasiliae (n. 535).

Clavaria Vaill.

102. Clavaria Mucronella Bres. n. sp.

Dense gregaria, clavulis liberis, subulatis, raro apice furcatis,

albis, subpruinatio, filiformibus, ",—1 mm altis, basi tenuiter albo-

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Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller, 291

fibrillosis; sporae hyalinae, obovatae, 6-4 —21/,—4 u; basidia clavata,

4-sterigmatica, 15—20 = 6—7 u.

Hab. ad ligna mucida »Blumenau« Brasiliae (n. 2a).

Obs. Clavariae Bresadolae Quel. valde affınis. Habitu

Mucronellam calvam refert, a qua tamen defectu subiculi, et

sporis diversa.

Pterula Fr.

103. Pterula arbuscula Bres. n. sp.

Stipes subcompressus, rufo-badius, basi 1 mm latus, 2 cm longus,

jam a basi ramosus; rami filiformes, glabri, pauci, distantes, rufiduli,

in ramulos bifidos vel alternatim dispositos divisi; hymenium amphi-

genum; basidia clavata, minima; sporae luteolae, obovatae, 10—12 —7u.

Hab. ad cortices »Blumenau« Brasiliae (n. 2b).

Obs. Tota planta 3 cm alta, 2 cm lata. Ramuli laxi, distantes,

apice steriles.

Typhula Pers.

104. Typhula Traillii Berk. et Cooke Fung. of Brazil n. 345.

Sacc. Syll. VI. p. 751.

Hab. ad ramenta »Blumenau« Brasiliae (n. 29f).

Obs. Clavula cylindraceo-subfusiformis, ubique fertilis, sacpe

falcata, alba, exsiccando lutea, sensim in stipitem abiens, 4-5 mm

longa, ";; mm circiter crassa,; stipes filiformis, concolor, glaber, sub

microscopio hinc inde aliqua setula? cuspidata, septata, praeditus

observatur, 5—7 mm longus. Sporae oblongo-obovatae, 5-6 — 2 gu;

basidia clavata, tetraspora, 15—20 = 6-7 u,

Hirneola Fr.

105. Hirneola delicata (Fr.) Bres. Funghi dello Scioa p. 7.

Laschia delicata Fr. Linn. 1830. p. 533. Laschia velutina Lev.

Champ. exot. p. 217. Laschia tremellosa Fr. Summ. Veg. Sc.

p- 325. Merulius favosus Willd. in Herb. Reg. Mus. Berol.! Auri-

cularia Auricula-ludae Möller Protob. p. 37. tab. I. f. 1. pr. p.

Hab. ad truncos »Blumenau« Brasiliae (n. 3a).

Obs. Clar. D. A. Möller in suo praeclaro opere |. c. contendit

Hirneolam Auriculam-Iudae (L.) prorsus identicam cum Laschia

delicata Fr. esse. Utique notae micrologicae conveniunt, at nihilo-

secius eas vix conjungerem, nam notae quoque macrologicae atten-

dendae sunt. Hirneola Auricula-Iudae semper crassior est,

hymenio obscuriore, in sicco nigro, tantum in speciminibus adultis

vix vel laxe subreticulato, dorso pilis griseo - fuscis, longioribus,

praedita. Laschia delicata Fr. e contra valde tenuior, papyrina,

fere pellucida, hymenio in vetustis semper poroso, carneo, dorso

pilis luteis, brevioribus ornato etc.

19*

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292 Ab. ]J. Bresadola.

In re mycologica saepe contigit, ut species, quas distinctas

tenere omnia suadent, notis microcospieis identicis gaudeant. Sic,

ut unum exemplum afferam, Tricholoma cnista et Tricholoma

paneolum notas habent micrologicas identicas,; at nemo eos spe-

cifice conjungeret,; puer enim ipse eos empirice distingueret. Nos

ergo, his de causis, Hirneolam Auriculam-ludae Linn. ab

Laschia delicata Fr. distinctam habemus. Magis proxima huic

est Hirneola auriformis Fr., species in Brasilia frequenter obvia;

imo existimamus quod Cl. Möller, e notis datis, hanc prae oculis

habuit, cum de Hirn. Auricula-ludae loquitur,; at istam quoque

nos a Laschia delicata distinctam censemus,

Eadem ratione, ducti, genus Hirneola, distinctum a genere

Auricularia admittimus, nam si characteres, qui a forma receptaculi

desumi possunt attendantur, Hirneolae species sub genere Auri-

cularia haud recte militant. Genus hoc formam habet omnino

pileatam, qua ad Sterea accedit; insuper stratus medianus non ita

mollis ut in Hirneola et indumentum pilei aliter dispositum, scilicet

in zonas concentricas.

Notis micrologicis ergo affınitates nobis magis innotescunt, ita

ut species olim disjunctae, suo naturali loco nunc systematice ordi-

nantur, at ex hoc notae macrologicae negligere non debemus, cum

istae quoque ad perfectam rerum naturalium cognitionem acquirendam

et ad species generaque affınia distinguenda optime inserviant.

Vitemus ergo ne extrema se tangant. Veteres enim notae micro-

scopicae negligebant, Neoterici, e contra, notae macrologicae non

tantum negligunt, sed spernunt. An hoc verum scientiae progressum

constituit?

106. Hirneola? lancicula Mont.Guy.n. 439, Sacc. Syll. VI.p. 770.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 25d).

Obs. Specimina observata sterilia, at, ex modo quo basidia (?)

sese gerunt, suspicor quod potius hie Orbilia vel Ombrophila sp.,

prouti jam cl. Patouillard monuit, habemus. Insuper et receptaculum

omnino pezizoideum.,

Guepinia Fr.

107. Guepinia spathularia (Schw.) Fr. El. II. p. 32. Meru-

lius spathularius Schw. Car. n. 834.

Hab, ad ligna St. Catharina pr. »Blumenau« Brasiliae (n. 17b).

Obs. Primo aspectu, ex hymenio plicato-venoso, videtur Can-

tharelli sp., at basidia cylindraceo-subclavata, apice longe furcata,

bispora, Guepiniam indicant. Basidia 30 —35 = 4—6 u. — Sporae

luteolae, cylindraceo-curvulae, demum 1 septatae, 9—11 —= 41/,—5 u.

Subhymenium proprium nullum; trama ex hyphis cylindraceo-ramosis,

hyalinis, contexta.

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Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 293

Dacryomitra Tul.

108. Dacryomitra Cudonia Bres. n, sp.

Luride lutea; stipite tereti, 1 mm circiter longo crassoque, levi;

clavula subglobosa, 1—2 mm diam., costis crassis, tortuosis, rugoso-

undulata; basidiis cylindraceo-clavatis, bifurcatis, 45—50 = 46 u;

sporis cylindraceo-subcurvulis, 1—3.-septatis, flavis, 8- 10 =5-—5'|y u;

hyphis subhymenialibus 3 u latis.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 24b).

Obs. E forma videtur prorsus Cudonia circinans diminuta.

Speciem hanc in alcohole asservatam vidimus; forte color nativus

diversus. e

Gasteromyceteae Willd.

Geaster Mich.

109. Geaster mirabilis Mont. Crypt. Guyan. n. 595. t. VI.

f. 8. De Toni Rev. Geastr p. 12. t. I. L. Sacc. Syll. VII. p. 79.

Hab. ad ligna mucida, Brasiliae (n. 22a).

Obs. Peristomium conico-compressum, sericeum, umbrinum,

basi concavo-marginatum, gleba nigra; sporae sub aqua luteo-fusci-

dulae, sphaericae, aculeolatae, 3'1,—5 u diam.; flocci cylindracei,

concolores, 4-5 u lati. Mycelium pannosum, superficiale, lignum

ex integro obtegens, album, dein exsiccando alutaceum, ex hyphis

filiformibus, hyalinis, dense contextis, efformatum. -

Myxomyceteae Wallr.

Physarum Persoon.

11l. Physarum cinereum (Batsch.) Pers. Syn. Fung. f. 170.

Rost. Mon. p. 102 f. 71, 72, 85. Sacc. Syll. VII. p. 344. Lycoperdon

cinereum Batsch. fig. 169.

Hab. in cortice »Blumenau« Brasiliae (n. 1d).

Tilmadoche Fr.

112. Tilmadoche viridis (Gmel.) Sacc. Mich. II. p. 263.

Syll. VII p. 360. Stemonitis viridis Gmel. Syst. II. 1469,

Tilmadoche mutabilis Rost. Monogr. p. 130, f. 123—127, 132.

Hab. in cortice »Blumenau« Brasiliae (n. 19a).

Didimium Schrad.

113. Didimium squamulosum (Alb. & Schw.) Fr. Syst.

Myc. III. p. 118. Diderma squamulosum Alb. & Schw. Consp,

tab. 4, f. 5. |

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 40b).

114. Didimium Clavus (Alb. et Schw.) Rost. Sluzowc. p. 153.

Sacc. Syll. VII. p. 377. Physarum Clavus Alb. et Schw. tab. 4. f. 2,

Hab. in caulibus »Blumenau« Brasilia (sine n.).

294 Ab. J. Bresadola.

Stemonitis Gled.

115. Stemonitis ferruginea Ehrb. Sylv. Berol. p. 20. f. VI.

A. B. Rost. Mon. p. 196f. 31 —39, 41—44 et 50. Sacc. Syll. VII.

p. 398.

Hab. in lignis putrescentibus »Blumenau« Brasiliae (n. le).

Tubulina Pers.

116. Tubulina cylindrica (Bull.) De Cand. Flor. Fr. II. p. 249.

Sacc. Syll. VIl. p. 406.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 26f).

" Obs. Sporis laxe verrucosis, globosis, 6—7 u diam.

117. Tubulina stipitata (Berk. et Rav.) Rost. Mon. p. 223.

f. 2. Sacc. Syll. VII. p. 407. Licea stipitata B. et Rav. North

Am. Fung. n. 551.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 26e).

Obs. Habitu videtur Mitrula, cum formis obsoletis Mitrulae

paludosae Fr. comparanda. In sicco stipes rufescens, peridiis in

capitulo obovato nigro conglomeratis,

Arcyria Hall.

118. Arcyria punicea Pers. Disp. meth. Fung. p. 10. Sacc.

Syll. VII. p. 426. Pat. Tab. An. Fung. p. 83. f. 195.

Hab. ad ligna »Blumenau« (n. 40c). In spiritu luride lutea evadit.

119. Arcyria cinerea (Bull) Schum. Enum. Pl. Saell. n. 1480.

Rost. Mon. f. 182, 183 et 193. Sacc. Syll. VII. p. 427.

Hab. in lignis putrescentibus »Blumenau« Brasiliae (n. lc).

Hemiarcyria Rost.

120. Hemiarcyria clavata (Pers.) Rost. Monogr. p. 267.

fig. 205, 207, 238. Sacc. Syll. VII. p. 447. Trichia clavata Pers.

Disp. p. 11.

Hab. in ligno putri »Blumenau« Brasiliae (n. 19c).

Obs. Tubi capillitii 6", —-7'/, u lati; sporae raro globosae,

8-9 « diam., generatim ellypticae, 9—10 — 7 u, dorsaliter jugatae,

laxe et breviter aculeolatae,. Etiam in speciminibus europeis, in

regione tridentina inventis, capillitii tubi et sporae exacte, ut supra

describuntur.

Discomyceteae Fr.

Otidea Pers.

121. Otidea hirneoloides (Berk.), Sacc. Syll. VII. p. 96.

Peziza hirneoloides Berk. Austr, Fung. n. 219. Cooke Mycogr.

f. 220.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 31b).

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 295

Lachnea Fr.

122. Lachnea Erinaceus Schw. Syn. Car. n. 1194 (Peziza)

Cooke Mycogr. f. 140. Sacc. Syll. VIII. p. 182.

Hab. in cortice putri »Blumenau« Brasiliae (n. 20a).

Obs. Asci cylindracei, basi tortuosi stipitati, 230—320 —12—13 u;

paraphyses apice anguste clavato, 3 „ lato; sporidia elliptica, primitus

2 guttulata, 18 — 20 — 10 u; setulae longissimae, cuspidatae, fulvae

600-700 = 20-—25 u. A Cooke l. c. setulae exibentur 250 « tantum

longae, sed vix aliam speciem crederem,

Helotium Fr.

123. Helotium cupreum Bres. n. sp.

Cupula plano-infundibuliformis vel convexo-umbilicata, 4-5 mm

lata, cuprea; extus dilutior; stipes basi attenuatus, concolor, deorsum

fuscescens, 2-3 mm longus, vix 1 mm crassus, substantia concolor,

ceraceo-membranacea; asci cylindraceo-subclavati, basi stipitato-atte-

nuati, 80-90 —4--5 u; sporidiis elongato-subeclavatis, 6-8 —=2— 2" u.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 29c).

124. Helotium aurantio-rubrum Bres. n. sp.

Ascomata stipitata, ceraceo-tenacella, glabra, aurantiaca, disco

plano-concavo, aurantio-rubro, 2—-4 mm lato, stipite tereti, 3-4 mm

longo, ?; mm crasso, basi nigricante; ascis cylindraceis, utrinque

attenuatis, 180--200 = 12-14 u; paraphysibus filiformibus, ramosis,

2 u latis; sporidiis navicularibus, interdum uno latere apiculatis,

demum 1-septatis, 22—30 —8 u.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 29b).

Obs. Forte huc ducendum est Helotium Buccina Mont.

Chil. VII. p. 409. species mihi parum cognita, sed vix Peziza Buc-

cina Pers.

Phialea !'r.

125. Phialea ambigua Bres. et Henn. n. sp.

Ascomatibus breviter stipitatis, plano-concavis, 2-4 mm latis,

extus griseolis, puberulis, disco albido-griseo, stipite brevi, griseo-

fuscidulo, puberulo, !/; mm circiter longo, crassoque; ascis cylindra-

ceo subclavatis basi attenuato-flexuosis, 80 —90 — 7-8 u jodo poro

apicali leviter caerulescentibus; paraphysibus filiformibus 1 '/g u circiter

latis; sporidiis elongatis, subcurvulis, hyalinis, primitus biguttulatis,

dein granulosis, 10—12 = 2\, u; pube ascomatis ex cellulis septatis,

sub microscopio luteolis, subfusoideis, caespitulosis, 20-25 — 79 u.

Hab. ad caules herbarum »Blumenau« Brasiliae (n. 12a).

Obs. Species ambigua inter Phialeas et Helotia nutans.

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a en nn rel lee rl a nal Elan a tar ai tee en . re ee

296 Ab. ]. Bresadola.

Erinella Ouel. emend.

126. Erinella similis Bres. n, sp.

Ascomatibus breviter stipitatis ex hemisphaerico plano-concavis

2-4 mm latis, extus albis, villoso-tomentosis, disco flavo-aurantiaco;

stipite brevi, albo, villoso-tomentoso, 1 mm circiter longo; ascis sub-

fusoideis, octosporis 100—120 = 7—8 u poro jodi ope caerulescente;

paraphysibus septatis, apice acutatis, ascos superantibus, inferne

2—3 u latis; sporidiis fusiformibus, rectis, vel curvulis, pluriguttulatis,

demum spurie pluriseptatis hyalinis, 36-45 = 2-—3 u; pilis asco-

matis sub mier. hyalinis cylindraceis, fasciculatis, granulosis 3 u latis.

Hab. in cortice arborum »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller n. 12c).

Obs. Habitu et coloribus prorsus cum Dasyscypha calycina

convenit, a qua notis micrologicis abunde diversa; videtur tamen

magis cum D. lachnoderma (B.) Rehm affınitate conjuncta, at colore

hymenii, sporidiis et ascis majoribus, et pilis ascomatis minus latis,

videtur satis distincta.

127. Erinella bambusina Bres. n. sp.

Ascomatibus breviter stipitatis, turbinatis, 1—1'/; mm latis, extus

villosis, luteo-cerinis, margine aureo-ciliato, disco flavido; stipite

brevi, concolore vel fusco, tomentosulo, 1 mm circiter longo, !/,;, mm

crasso, ascis clavato-fusoideis, octosporis, basi attenuato-pedicellatis,

80-100 = 7—9 u, poro jodi ope caerulescente; paraphysibus septatis,

apice attenuato-subacutatis, medio 1'),—2 u latis, ascos superantibus;

sporidiis clavatis vel fusiformibus, rectis vel curvulis, hyalino-strami-

neis, continuis vel demum spurie septatis, 35—45 — 21,3 a; pilis

ascomatis sub microscopio luteolis, granulatis, 3—4 u latis,

Hab. in culmis Bambusae »Blumenau« Brasiliae (n. 45a).

Obs. Erinellae orinocensi Pat. et G. proxima, a qua tamen

notis datis bene distincta.

Midotis Fr.

128. Midotis heteromera Mont. Syll. Crypt. n. 642. Sacc.

Syll. VII. p. 547.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 25c).

Obs. Ascomatibus extus, in sicco, rugulosis, granulis minimis

dense conspersis; ascis cylindraceo-subclavatis, basi attenuato- stipi-

tatis, octosporis, SO—- 100 —= 6-7 u; sporidiis elongatis, biguttulatis,

lateribus, vel uno latere saepe compressis, luteolis, 8-10 — 3-4 u.

Ombrophila Fr.

129. Ombrophila roseola Bres. n. sp.

Ascomatibus stipitatis, plano-convexis, vel plano subdepressis,

carnoso-gelatinosis, glabris, roseis, 2—-4 mm latis; stipitibus albo-

roseolis, compressis, saepe connato-stipatis, farctis, 5-6 mm longis,

lungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 297

1',—3 mm crassis; ascis clavatis, 8 sporis, 80—90 = 6-8 u; para-

physibus ramosis filiformibus, apice quoque hyalinis, 1'/; « circiter

crassis; sporidiis subdistichis, clavatis, hyalinis, 8-10 = 3 u.

Hab. ad terram limosam »Blumenau« Brasiliae (n. 38b).

Obs. Aspectu externo prorsus Tremellam sarcoidem simulat,

at affınitate Ombrophilae Clavi proxima.

Coryne Tul.

130. Coryne sarcoides (Jacq.) Tul. Carp. III. p. 190. tab. XVII.

f. 1—10. Lichen sarcoides Jacq. Misc, 2. t. 20.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasilia (n. 38d).

Tuberoideae Vittad.

Endogene l.ink.

131. Endogene reniformis Bres. n. sp.

Ascomata reniformia, luteola vel straminea (in alcohole), 4-5 mm

lata, cortice tenuissimo ex hyphis e capillitio prodeuntibus efformato;

gleba subgranulosa, concolore; hyphis capillitii hyalinis, 3—-5 u: latis;

ascis ex hyphis oriundis, globosis vel subellipticis, interdum irregu-

laribus margine tortuoso, 21-——-30 = 17—24, monosporis; sporidiis

globoso-subellipticis, luteis, protoplasmate granuloso, 15—24— 15— 18.

Hab. in foliis »Blumenau« Brasiliae (n. 45d).

Obs. In hac specie sporidia bene evoluta ab ascis clare distincta,

at extra ascos non vidi, nec modum quo asci deiscunt cognoscere potui.

Pyrenomyceteae Fr. emend.

Eurotium Link.

132. Eurotium herbariorum (Wigg.) Link. Spec. Plant. 1.

p. 26. Mucor herbariorum Wigg.

Hab. in Lentini sp. vetusta, indeterminabili »Blumenau« Bra-

siliae (n. 42a).

Xylaria Hill.

133. Xylaria portoricensis Klotz. Fungi Portor. p. 364.

Sacc. Syll. I. p. 313.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 29g).

Obs. Asci in specimine exibito jam resorpti; sporidia subfusi-

formia, lateraliter depressa, vel subcurvula, fusca, 20—24 —= 6—8 u.

Ustulina Tul.

134. Ustulina vulgaris Tul. Sel, Fung. Carp. II. p. 23. tab III.

f. 1—6. — Hypoxylon ustulatum Bull. tab. 487. f. 1.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 38f).

Obs. Forma exotica, quam europea tenuior,; hymenium conidi-

ferum stroma initio vestiens albido-stramineum et perithecia aliquan-

tulum minora; cetera concordant. Sporidia fusca, 36—39 —= 7—12 u.

298 Ab. J. Bresadola,

Hypoxylon Bull.

135. Hypoxylon fusco-purpureum (Schw.) Berk. Cub. Fung.

n. 835. Sphaeria fusco-purpurea Schw. New. Am. Sphaer.

t. I. £. 1.

Hab. In cortice »Blumenau« Brasiliae (n. 47d).

Obs. Asci longe stipitati, pars sporifera 75—85 = 7—9;, stipes

8S0-—90 = 1—2 u; paraphyses filiformes, guttulatae; sporidia oblonga,

subcurvula 13—15 = 6—7 u, raro usque ad 18 1 longa.

Kretzschmaria Fr.

136. Kretzschmaria Clavus Fr. Summ. Sc. p. 409. Sacc.

Syll. II. add. p. XXIX. Sphaeria Clavus Fr. Linnaea p. 543.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 3b).

Obs. Sporae naviculares, uno latere applanatae, demum longi-

tudinaliter rimosae, fuscae, 30—35 = 8—12 u, e latere 6—7 u crassae.

Trichosphaeria Fuck.

137. Trichosphaeria acanthostroma (Mont.) Sacc. Syll. TI.

p. 454. Sphaeria acanthostroma Mont. Syll. Crypt. n. 792.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 44d).

Gibbera !r.

138. Gibbera Patouillardi Bres. Caelosphaeria pezi-

zoidea Pat. Bull. Soc. Myc. 1888. p. 106 (nec Gibbera pezizoidea

Pat. I. c. 1887. p. 176).

Hab. supra corticem arborum »Blumenau« Brasiliae (n. 28c).

Obs. Sporae maturae 1-septatae, septo praecipue jodii ope evi-

dentissimo, subfusoideae, 9—12 = 3—3 !/g ı«. Mycelium fusco nigrum

ex hyphis septatis, 8—-9 u latis.

Mölleria Bres. n. gen.

Stroma subcarnosum, verruciforme, parenchymati foliorum inna-

tum; perithecia plus minusve immersa; asci polyspori; sporidia sub-

fusoidea, continua, hyalina.

139. Mölleria sulphurea Bres. n. sp.

Hypophylla; stromatibus verruciformibus e peritheciis prominulis

granulatis, vivide luteis,; peritheciis semiimmersis, obovatis, minute

papillatis, concoloribus,; ascis cylindraceo-subventricosis, basi atte-

nuato-pedicellatis, 250-— 300 = 10-16 «, polysporis; sporidiis hya-

linis, fusoideis, innumer, 12—13 = 21—3 u.

Hab. in foliis arborum vivis vel mortuis »Blumenau« Brasiliae

(n. 28b).

Obs. Genus hoc, inter Hypocreaceas prope Polystigma

locandum, claro Myc. Dr. A. Möller jure meritoque dicatum.

5 BABES ee ai sahen aiänelle Lu nu ta nun in

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 299

Hypomyces Fr.

140. Hypomyces Möllerianum Pres. n. sp.

Stromate late effuso, spongioso-gossypino, 1'/—2 mm crasso,

albido-stramineo; peritheciis subsuperficialibus, basi tantum stromati

nidulantibus, albis, obovatis, fusco-papillatis, 200—250 u; ascis cylin-

draceo-subfusoideis, 80—90 = 5—6 u; sporidiis subdistichis, elongatıis,

utrinque attenuatis, 1-septatis, interdum 3-septatis, 16 =4 u.

Nectria Fr.

141. Nectria asperula Winter in Hedw. 1886. p. 93. Sacc.

Syll. IX. p. 963.

Hab. ad corticem arborum, praecipue in Amphisphaeria sp.

parasitica. »Blumenau« Brasiliae (Dr. Möller n. 9a).

142. Nectria scitula Bres. n. sp.

Peritheciis gregariis, superficialibus, nullo stromate fultis, minutis,

obovatis, succineis, in sicco pezizoideo-collapsis, !/;, mm latis, opice

excepto, tomento albo indutis, contextu indistincte celluloso, ascis

cylindraceis, 70 —- 80 = 8—10 u; sporidiis hyalinis, subdistieis, sub-

fusoideis, 1-septatis, 12 -15=4—5 u; hyphis indusii, hyalinis, apice

tortuosis, 27, —3 u latis.

Hab. ad folia »Blumenau« Brasiliae (n. 9b).

Obs. In statu sicco Lachnellam papillarem (Bull.). Karst.

optime simulat.

143. Nectria capitata Bres. n. sp.

Peritheciis in caespitulis 2-4 mm latis collectis, raro solitariis,

superficialibus, glabris, ovoideo-capitatis, 230300 u latis, 1, —”, mm

longis, basi connatis, purpureo-rubris, capitulo miniato, membranaceis,

contextu indistincte-celluloso, flammeo, ostiolo vix prominulo, sub-

nigricante; ascis jam esorptis; sporidiis hyalinis elongatoellipticis,

medio 1-septatis, subconstrictis, 283— 32 = 10—13 u, episporio longi-

tudinaliter tenuissime striato.

Hab. ad cortices »Blumenau« Brasiliae (n. 25b et c).

Obs. Notis micrologieis Nectriae Balansae Speg. accedit,

sed modus crescendi, habitus etc. diversi. — Perithecia ovoideo-

elongata, prope apicem constricta ita ut capitata videantur, et bene

statum juniorum, diminutum Agarici cujusdam repraesentent.

144. Nectria Epichloe Speg. var. rosea Bres.

Hab. in foliis Andropogineae cujusdam »Blumenau« Brasiliae

(Dr. Möller n. 28a).

Obs. A forma typica (cfr. Spegazzini Fungi Guar. Pug. 1. n. 240)

differt tantum colore peritheciorum amaene roseo. An forte hoc ex

aetate pendet?

;

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300 Ab. J. Bresadola.

Hypocrea Fr.

145. Hypocrea vinosa Cooke N. Zealand. F. Grev. VII. 65.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 45c).

Obs. Asci 110— 120 — 5'/,-—-6 u; sporidiorum articuli, sub-

globoso -cuboidei, 6—7 = 5',—6 u.

Color in fungo humectato vivide ruber, in sicco atro-vinosus,

146. Hypocrea succinea Bres. n. sp.

Stromatibus gregariis, orbicularibus vel lenticularibus, carnoso-

ceraceis, pallide succineis, intus albidis, 1—2 mm diam., superficie

rugulosa; peritheciis immersis, paucis, prominulis; ascis cylindraceis

110—120 = 5—5'/, a; sporidiorum articulis subgloboso - cuboideis,

5—61/ —= 4-5 u,

Hab. ad corticem arborum »Blumenau« Brasiliae (n. 8b).

147. Hypocrea rufa (Pers.) Fr. Summ. Veg. Scand. p. 383,

Sphaeria rufa Pers. Synop. p. 13.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 47a).

148. Hypocrea Patella Cooke et Peck, 29 Rep. on the St.

Mus. N. Y.

Hab. ad ligna »Blumenau« Brasiliae (n. 25a).

Obs. Asci cylindracei, 60— 70 °= 4 a; articuli sporidiorum glo-

boso-cuboidei, chlorino-hyalini, 3—3'/, « diam.

149. Hypocrea glaucescens Bres. n. sp.

Stromate late effuso, carnosulo-membranaceo, 1 mm crasso, alu-

taceo-pallido, superficie glaucescente vel chlorina; peritheciis dense

stipatis, immersis, ostiolis papillatis prominulis; ascis cylindraceis,

100-110 = 6—7 u; articulis sporidiorum subgloboso-cuboideis, hya-

linis, 5-6 = 4 —5 u.

Dussiella Pat.

150. Dussiella tuberiformis (Berk. et Rav.) Pat. in Bull.

Soc. Mye. fr. 1890 tom. VI. p. 106-109. Hypocrea tuberiformis

Berk. et Rav. North Am. Fung. n. 801. Sacc. Syll. II. p. 534.

Hab. in culmo arundinariae »Blumenau« Brasiliae (n. 8a).

Phyllachora Nits.

151. Phyllachora Julocrotonis Bres.n. sp. Maculae nullae;

stromatibus epiphylis, innato-superficialibus, subglobosis, vel pulvi-

natis, laxe gregrariis, subruguloso-papillatis, carbonaceis, atro-niten-

tibus, "/,—1 mm latis, 1--4 locularibus, loculis majusculis; ascis

cylindraceis, crassiuscule pedicellatis, paraphysibus, filiformibus, ob-

vallatis, 100-120 = 10—12 u; sporidiis recte vel oblique monostichis,

ellypticis, uno latere compressis, chlorino-hyalinis, 14—16 = 8s—10 u.

Fungi Brasilienses lecti a cl. Dr. Alfredo Möller. 301

Hab. ad folia viva Julocrotonis sp. »Blumenau« Brasiliae

(n. 28d).

Obs. Species haec stromatibus saepe 1-locularibus, forma fere peri-

thecioideaad Physalosporam plane accedit, sed eorum natura prorsus

dothideacea. Phyllachorae Michelii Speg. videtur valde affınis.

Myriogenospora Atkins.

152. Myriogenospora Paspali Atkins. Bull. Torr. Cl. 1894.

p. 225.

Hab. in foliis Paspali sp. »Blumenau« Brasiliae (n. 33c).

Obs. A forma typica, l. c. descripta, differt stromatibus folii-

colis, multo longioribus et sporis majoribus, sc. 25-40 — 1!, u,

dum in typico sporae sunt 15— 25 — 0,5-—0,8. Attamen distinguere

nolo, quia nondum satis notae sunt.

Hyphomyceteae Martius emend,

Chromosporium Corda.

153. Chromosporium fulvum (Berk. et C.). Sacc. Syll. IV.

p. 6. Gymnosporium fulvum B. et C. Cub. Fungi n. 584,

Hab. ad folia »Blumenau« Brasiliae (n. 21b).

Obs. Hyphae repentes, hyalinae, ramosae, ramulos laterales,

sporigeros, brevissimos ferentes; conidia fulva, obovata, 23— 25 — 50 A

vel sphaerica, 18 —20 « diam. — Acervuli vivide fulvo-lateritii, or-

biculares vel elongati, confluentes, macula subpallidiore insidentes.

Penicillium Link.

154. Penicillium glaucum Link. Obs. Mye. I. p. 15.

Hab. ad quisquilias »Blumenau« Brasiliae (n. 32e).

Sporotrichum Link.

155. Sporotrichum floccosum Bres. n. sp.

Late effusum, albo-stramineum, floccosum; hyphis repentibus

ramosis, 4—6 ;: latis, in ramos laterales, septatos, strictiores, abeun-

tibus; conidiis acrogenis vel lateralibus, hyalinis, deorsum apiculatis,

14—16=7—9 u.

Hab. ad corticam arborum »Blumenau« Brasiliae (n. 177).

Virgaria Nees.

156. Virgaria cardiospora Bres. n. sp.

Caespitulis dense gregariis, pistilliformibus, apice penicellatis,

1—1'a mm longis, nigris, ex hyphis septatis, luteo-fuscis, 4—6 u

latis compositis; conidiis cordiformibus, fuscis, continuis, demum

spurie 1-septatis, 20—22=12 u.

Hab. ad caules herbarum »Blumenau« Rrasiliae (n. 4a).

302 Ab. J. Bresadola.

Helminthosporium Link.

157. Helminthosporium Ravenelii Curtis et Berk. North

Amer. Fungi n. 628. Sacc. Syll. IV. p. 412.

Hab. in inflorescentia Sporoboli sp. »Blumenau« Brasiliae

(n. 44b).

Obs. Hyphae olivaceae, flexuoso-nodosae, ramosae, septatae

150—180 = 4—5 u; conidia cymbiformia 3—4 septata, fusca, 40-50 —

12—13 u. Aspectu externo videtur omnino Ustilaginis sp.

Stilbum Tode.

158. Stilbum stromaticum Berk. in Hook. Lond. Journ.

1843. p. 653.

Hab. ad cortices »Blumenau« Brasiliae (n. 21).

Obs. E sclerotio cerebriforme oriundum; stipites plurimi ex

quovis sclerotio, nigri; capituli aurei, globosi, minimi; conidia sub-

globosa vel obovata, 1-1", —=1 u.

159. Stilbum cinnabarinum Mont. Cub. p 308. tab. 11. f. 3.

Sacc. Syll. IV. p. 571.

Hab. In cortice »Blumenau« Brasiliae (n. 4b).

Obs. Conidiis hyalinis elongatis, interdum biguttulatis, 6—7 — Iu.

Bactridium Kunze.

160. Bactridium flavum K. et S. Myk. Heft I. p. 5. t. 1. f. 22.

Sacc. Syll. IV. p. 691.

Hab. in lignis putridis »Blumenau« Brasiliae (n. 11a).

Mycelia sterilia.

161. Pachyma Cocos (Schw.) Fr. Summ. Veg. Scand. p. 242.

Sclerotium Cocos Schw. Carol. p. 30.

Hab. in terra »Blumenau« Brasiliae (n. 21a).

Clavogaster, eine neue Gasteromyceten-

gattung, sowie mehrere neue Agaricineen

aus Neu-Seeland.

Von P. Hennines.

(Mit Textfigur.)

Von Herrn Professor Dr. Schinz in Zürich wurde mir freundlichst

eine Collection von Pilzen

übersendet, die von Herrn Dr. Häusler

in Aukland gesammelt und gesendet waren. Ich gebe hier eine

kurze Aufzählung der darunter befindlichen neuen Arten.

Clavogaster P. IIenn. gen. nov.

Perithecium subcoriaceum, persistens e stratis binis discoloribus

“ efformatum, clavatum, stipitatum. Capillitium subfasciatum in cellulas

favosas, polyedras, sporis levibus, ellipsoideis, coloratis, pedicellatis.

Hippoperdo peraffinis.

Cl. novo zelandicus

"34

din

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Bus.

fu nal 4%

1 kn

erf!

1. Fruchtkörper, 2. Stück einer

Capillitiumfaser, 3. Sporen,

4. Glebazellen.

P. Henn. n. sp.

Stipitatum, clavatum, peridio fusi-

formi, vertice subacutato, longitudi-

naliter substriata; sicco subrugoso, flavo-

olivascente vel brunneolo ca. 2—2", cm

longo c. 1 cm lato; stipite farcto tereti

vel subceompresso flavo subaurantiaco

10—12 mm; gleba favosa, cellulis nume-

rosis excavatis cinnamomeis, penta-

vel hexagonis; sporis ellipsoideis, ob-

longis, flavis subfuscidulis levibus, pedi-

cellatis 13—15 X 7—8 u, pedicello

hyalino 3—8 u longo; floccis hyalinis,

fasciatis 4— 8 u crassis.

Aukland, Ohampo. — Dr. Häusler.

Die Gattung scheint Hippoperdon nahe zu stehen, ist aber durch

die angegebenen Merkmale ganz verschieden. Es lässt sich bei dem

trockenen Exemplar nicht sicher feststellen, in welcher Weise die

304

P. Hennings.

Sporen nach aussen gelangen. Die Peridie platzt anscheinend von

oben nach unten auf und wird dann die wabige Gleba sichtbar.

Aeusserlich hat der Pilz mit Clavaria pistillaris gewisse Aehnlichkeit.

Pluteus Fr.

Pl. phlebophoroides P. Henn. n. sp.

Pileo carnosulo convexo -explanato, cinnamomeo vertice obscu-

riore venosulo, margine levi subglabroque 2-3 cm diametro; stipite

subfistuloso, striato, tenui pallido, basi albo-villoso 4 cm longo, 2 mm

crasso, lamellis liberis, confertis, latis, flavo-carnescentibus; sporis

ovoideis vel subellipsoideis 5'/,—7 1), x 41/,—6 u, episporio levi pallide

incarnato. »

Aukland, Ohampo, an Stämmen. — Dr. Häusler.

Die Art ist mit Pl. phlebophorus Diet. var. marginata Quel.

nahe verwandt, aber durch die angegebenen Merkmale verschieden.

Eccilia.

E. Häusleriana P. Henn. n. sp.

Pileo subcarnoso subconvexo, depresso vel subinfundibuliformi

atrocastanco, levi glabroque margine substriato, "/;—2 cm diametro;

stipite cavo, striato tortoque, cinereo, basi subincrassato 15-20 cm

longo, 1'a—2 mm crasso; lamellis decurrentibus, subdistantibus, in-

aequilongis basi venoso-connexis, flavo-brunnescentibus; sporis sub-

globosis subacutangulis 31) —4', u, episporio pallide incarnatis

basidiis clavatis.

Aukland, Ohampo, rasig an Stämmen? — Dr. Häusler,

Die Art scheint mit E. griseo-rubella Lasch. verwandt zu sein.

Flammula Fr.

Fl. Schinziana P. Henn.

Pileo carnosulo convexo explanato, obtuso subumbonato, aureo-

ochraceo, squamis subimbricatis vel subverrucosis tecto ca. 15 mm

diametro; stipite fistuloso, striato subfibroso, pallido vel ochraceo,

curvato, radicato, 3—4 cm longo, 1'/—2 mm crasso; lamellis adnatis,

subconfertis, latis subventricosis, ochraceis; sporis ovoideis vel ellip-

soideis basi apiculatis 1 guttulatis 6-8 X 5-5", u, episporio luteo-

ochraceo levi.

Aukland, Ohampo, an Baumstämmen. — Dr. Häusler.

Die Art ist mit Fl. sapinea Fr. am nächsten verwandt, aber

durch die angegebenen Merkmale, sowie habituell ganz verschieden.

Marasmius Fr.

M. auklandicus P. Henn. n. sp.

Pileo tenui membranaceo subtranslucente, campanulato, vertice

papillato, striato plicatoque pallido-flavescente 3 -5 mm diametro;

| Begründet 1852 durch Dr. Rabenhorst B

als |

| x »Notizblatt für kryptogamische Studien.«

HEDWIGIA.

Organ

| Kryptogamenkunde

nebst

Kepertorium für kryptog. Literatur.

Redigirt

von

Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von

Paul Hennings und Dr. G. Lindau

in Berlin.

Ergänzende Bemerkungen über die von Herrn Dr. Julius Röll in Nord-

Amerika im Jahre 1888 gesammelten pleurocarpen Moose. — W. Zopf,

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. — Repertorium No. 6.

Hierzu eine Beilage von R. Friediänder & Sohn, Berlin NW. 6, Carlsstrasse Il.

Druck und Verlag von C. Heinrich,

3 Dresden -N., kl. Meissnergasse 4.

Erscheint in zweimonatlichen Heften.

Abonnement für den Jahrgang 12 Mark

durch alle Buchhandlungen.

Ausgegeben am 28. December 1896.

An die Leser und Mitarbeiter der

„Hedwigia”“.

Zusendungen und Anfragen redactioneller Art werden unter

der Adresse:

Prof. Dr. G. Hieronymus,

Berlin, Botanisches Museum, Grunewaldstrasse 6/7,

mit der Aufschrift

„Für die Redaction der Hedwigia“

erbeten.

Um eine möglichst vollständige Aufzählung der krypto-

gamischen Literatur und kurze Inhaltsangabe der wichtigeren Arbeiten

zu ermöglichen, werden die Verfasser, sowie die Herausgeber der

wissenschaftlichen Zeitschriften höflichst im eigenen Interesse er-

sucht, die Redaction durch Zusendung der Arbeiten oder Angabe

der Titel baldmöglichst nach dem Erscheinen zu benachrichtigen;

desgleichen sind kurz gehaltene Selbstreferate über den wichtigsten

Inhalt sehr erwünscht.

In Rücksicht auf den Gesammtumfang der Zeitschrift sollen die

einzelnen Abhandlungen die Länge von 3 Bogen im Allgemeinen

nicht überschreiten, desgleichen die einer Abhandlung bei-.

zugebenden Tafeln nicht mehr als zwei betragen. Die Original-

zeichnungen für die Tafeln sind im Format 13 x 21 cm mit mög-

lichster Ausnutzung des Raumes und in guter Ausführung zu liefern,

auch sind die Manuscripte nur auf einer Seite zu beschreiben.

Die Autoren erhalten auf Wunsch 25 Sonderabzüge kostenlos,

doch werden solche in beliebiger Anzahl zum Selbstkostenpreis

geliefert.

C. Heinrich’s Verlag.

Clavogaster, eine neue Gasteromycetengattung etc. 305

stipite tenui, curvato tereti vel subcompresso pruinoso, basi disci-

formi albo villoso radiante 3—-6 mm longo vix 0,5 mm crasso, pallido;

lamellis distantibus, paucis (8—12) in collarium postice conjunctis,

acie crassis, pallidis, sporis globosis, levibus, hyalinis 6—7 u.

Aukland, Ohampo, an faulenden Zweigen. — Dr. Häusler.

Fomes Fr.

F. Häuslerianus P. Henn. n. sp.

Pileo rigido sublignoso, reniformi vel flabellato radiato venoso-

rugoso, olivaceo pruinoso-tomentosulo dein nudo subnigro, azono

21—3 cm longo, 3—4 cm lato, margine rigido tenui undulato cre-

nato vel subdentato, stipite lateraliter brevi, basi disciformi olivaceo-

pruinoso; contextu pallido-subflavescente; hymenio subcinereo, tubulis

brevibus, poris punctiformibus, minutis, rotundatis; sporis subglobosis.

Aukland, Ohampo, an Stämmen. — Dr. Häusler.

Der Hut hat gewisse Aehnlichkeit mit F. Auriscalpium Mont., ist

jedoch nur sehr kurz gestielt, starr, fast holzig, Anfangs mit oliven-

farbigem, sehr kurzfilzigem Ueberzug, später nackt, fast schwarz, mit

erhabenen aderigen Runzeln bedeckt. Der Rand ist sehr dünn,

starr, etwas wellig gekerbt oder auch gezähnelt. Die Röhren sind

kurz, die Poren sehr klein, rundlich, aschfarben, die älteren am

Rande schwärzlich.

Hedwigia Ba, XXXV. 1896, 20

Ergänzende Bemerkungen

über die von Herrn Dr. Julius Röll in Nord-Amerika

im Jahre 1888 gesammelten pleurocarpen Moose.

Von F. Renauld und J. Cardot.

In einem der letzten Hefte der „Hedwigia“ (Band XXXV. 1896)

erschienen von Herrn Dr. C. Kindberg in Linköping Berichtigungen

zu den Bestimmungen der von Herrn Dr. Julius Röll in Nord-Amerika

im Jahre 1888 gesammelten Moose, die den Gegenstand einer in

derselben Zeitschrift im Jahre 1893 (Band XXXII) veröffentlichten

Abhandlung bilden.

Was uns betrifft, so müssen wir erklären, dass unter den Ab-

änderungen, die Herr Kindberg glaubte an unseren Bestimmungen

der pleurocarpen Moose vornehmen zu sollen, sich keine einzige be-

findet, die gerechtfertigt wäre. Indem wir 3 oder 4 Arten, über die

wir uns eben unmöglich äussern können, entweder weil wir die be-

treffenden Exemplare nicht mehr vor uns haben, oder weil unser

Material nicht hinreicht, uns ein abschliessendes Urtheil zu gestatten,

bei Seite lassen, wollen wir die Gründe angeben, die uns abhalten,

den Bestimmungen des Herrn Kindberg zuzustimmen.

Pseudoleskea atrovirens Dicks. Yellowstone Nat. Park

No. 1539. — Herr Kindberg bezieht diese Nummer auf die Pseudol.

falcicuspis C. Müll. et Kindb. Diese Art beschreibt er in dem Catalog

of Canadian Plants, Pars VI. Musci pag. 182: „Plants densely tuted.

Stems much branching. Leaves very papillose, denticulate

above, short, ovate-lanceolate, attenuate to on acute or filiform,

often curved point, long decurrens; margins recurved to or above

the middle, not in the upper port; cells rotundate, at the angles

quadrate; costa vanishing far below the acumen. Dioecious. Differs from

P. atrovirens principally in the long-decurrent, very distinctly

papillose and more denticulate leaves.“

Nun sind aber bei No. 1539 der Pflanze des Herrn Röll die

Blätter nicht weiter herablaufend, als bei der europäischen Pseudol.

atrovirens; sie sind ganzrandig, an der Spitze kaum gezähnelt

und am Rand bis zur Spitze umgerollt. Die Rippe reicht in die

Blattspitze; endlich sind die Zellen länglich und glatt. Man

End. dl ar m aan.n > Mn nahe a a a

Ergänzende Bemerkungen etc. 307

sieht, wie wenig diese Pflanze der Beschreibung der Ps. falcicuspis

entspricht. Für uns ist es eine einfache Form von P. atrovirens,

die zu P. rigescens Lindb. neigt.

In der „Hedwigia“ 1893, Heft 4, p. 248 haben wir uns des

Längeren über die amerikanischen Varietäten dieser Art ausgesprochen,

und diese Bemerkungen sind kürzlich in dem Bulletin de l’herbier

Boissier 1896, p. 7 wiederholt worden. Wir brauchen also nicht

auf diesen Gegenstand zurückzukommen; wir begnügen uns damit,

hinzuzufügen, dass nach der Beschreibung die P. falcicuspis wahr-

scheinlich auch in den Formenkreis der P. atrovirens gehört, dem

man bereits mit Sicherheit die Antitrichia (!) oligoclada Kindb. Enum.

Bryin. exot. p. 7 (Pseudoleskea oligoclada Kindb. in Cat. Canad.

Pl. Musci p. 180) einfügen kann.

Camptothecium aureum (Lag.). Vancouver Isl. No. 105a und

107. — Herr Kindberg bezieht dieses Moos auf Camptoth. pinnati-

fidum Sulliv. et Lesqu. Man braucht indessen nur auf die Tafel 77

des Supplement des Icones von Sullivant und auf No. 513 der Musci

bor.-amer. exsicc. 2. Ausg. einen Blick zu werfen, so sieht man, dass

das C. pinnatifidum ein viel schlankeres Moos mit viel dünneren

Aesten ist, als das von Herrn Dr. Röll gesammelte. Indessen wollen

wir wiederholen, dass wir das C. pinnatifidum nur als eine Varietät

oder eine durch den Standort bedingte Form von C. aureum ansehen.

Was die Exemplare betrifft, die Herr Dr. Röll auf Vancouver Isl.

gesammelt hat, so sind sie fast identisch mit denen des Mittelmeer-

gebiets, obgleich ein wenig schlanker, als die meisten dieser; in allen

Fällen aber sind sie robuster, als C. pinnatifidum,

In der Revue»bryolog. 1895, S. 85 beschreibt Herr Kindberg

ein C. aureolum n. sp., für das er als Standort angiebt: „Norwegen

(E. Nyman, C. Kaurin), Amer. sept. Verein. Staaten, Pacific Distr,

(Röll, com. Cardot).“ Wir kennen die norwegischen Exemplare nicht

und es ist uns nicht möglich, in den Sammlungen des Herrn Röll

eine einzige Art zu finden, auf die sich die Beschreibung anwenden

liesse, die Herr Kindberg von C. aureolum giebt.

Brachythecium erythrorhizon (C. Müll.). Cascaden, Rigi,

am Clealum Lake bei Easton No. 933, — Herr Kindberg bezieht

diese Nummer auf B, intricatum (Hedw.). Er vergisst wahrscheinlich,

dass dieses einen rauhen Fruchtstiel hat, während das Moos vom

Clealum Lake einen ganz glatten Fruchtstiel zeigt, welch’ letzteres,

wie wir bereits in „Hedwigia“ 1893, Heft 4, p. 260 bemerkt haben

und wie wir entschieden wiederholen, durchaus identisch ist mit B.

erythrorhizon aus Finnland und Skandinavien.

Brachythecium velutinum (L.). Oregon, Mt. Hood No. 1119

(B. intricatum [Hedw.] Kindb.). — Mit Schimper und den neueren

Autoren betrachten wir B. intricatum Hdw, als eine einfache Form

20*

308 F. Renauld und J. Cardot.

oder Varietät von B. velutinum. Die Charaktere, die Hedwig der

Form der Spitze bei den Perichätialblättern zur Unterscheidung von

H. intricatum entnimmt, sind ohne Werth, da Herr Boulay die Ver-

änderlichkeit der Form der Blätter bei Br. velutinum nachgewiesen hat.

Das Hypnum declivum Mitt., das Herr Kindberg als Varietät

zu Brachythecium intricatum zieht, hat sicherlich mehr Bedeutung.

Man kann darin eine Subspecies des B. velutinum erblicken, die

namentlich durch ihren kürzeren und sehr rauhen Kapselstiel und

ihre hängende Kapsel charakterisirt ist und der die No. 732 exp.

und No. 854 der Sammlung des Herrn Röll gut entsprechen.

Brachythecium velutinum (L.). Oregon, Mt. Hood No. 1113.

(B. pseudo-erythrorhizon Kindb.) Die zur Unterscheidung

des B. pseudo erythr. von B. velutinum angegebenen Merkmale haben

gar keinen Werth, wenn man die vielen Varietäten betrachtet, die

das B. velutinum sowohl in Europa, als auch in Amerika und be-

sonders in den westlichen Territorien, wo es verbreiteter zu sein

scheint, als im Osten, aufweist. Diese Varietäten beziehen sich

hauptsächlich auf die Länge des mehr oder weniger rauhen Kapsel-

stiels und die Form und die Richtung der Blätter, deren Rand bald

flach, bald umgerollt, bald mehr, bald weniger gezähnt ist, ferner

auf die Länge der Blattspitze, auf das mehr oder weniger enge Zellnetz

und endlich auf die mehr oder weniger zahlreichen Blattflügelzellen.

Wir können also in dem Br. pseudo-erythrorhizon nur eine lokale Form

des Br. velutinum erblicken. Ebenso ist es mit No. 938, die durch

ihren kurzen und sehr wenig rauhen Fruchtstiel bemerkenswerth ist.

Brachythecium laetum (Brid.) forma. dlinois, Argyle bei

Chicago, No. 1862. (B. digastrum C. M. et Kindb.) — Das Br,

laetum, sehr verbreitet und sehr variabel in Nord-Amerika, ist in

Europa wenig verbreitet und wenig formenreich.

Wenn wir die europäischen Exemplare der bekanntesten Stand-

orte näher untersuchen, diejenigen, welche Schimper in der 2. Aus-

gabe der Synopsis angiebt, Bayerbrunn bei München (Sendtner),

Eichstätt (Arnold), Rhön (Geheeb), so constatiren wir bei denselben

eine diöcische Inflorescenz, eine nach oben gerichtete Kapsel, ziem-

lich lang zugespitzte, in eine feine Spitze auslaufende, schwach ge-

zähnte Blätter, ein enges Zellgewebe, kleine und infolge der über-

grossen Granulationen dunkle Blattflügelzellen.

Die zahlreichen Exemplare, welche wir aus verschiedenen Gegenden

Nord-Amerikas erhalten haben, sind im Allgemeinen unfruchtbar; fast

alle haben eine kürzere, breitere und stärker gezähntere Blattspitze,

als die oben erwähnten Exemplare Europas. Die Abänderungen be-

ziehen sich hauptsächlich auf die Gestalt der Pflanze, auf die Grösse

und die mehr oder weniger gedrängte dachziegelförmige Stellung der

Ergänzende Bemerkungen etc. 309

Blätter, auf die mehr oder weniger merkliche Breite der Falten und

auch auf das Zellgewebe, welches bei gewissen Exemplaren aus

breiteren und kürzeren Zellen besteht, während dagegen die viereckigen

Blattflügelzellen manchmal verhältnissmässig gross sind, bald verdunkelt

durch die Granulationen, bald fast durchsichtig und manchmal sich

bis zu der Blattrippe ausdehnend.

Es ist augenscheinlich, dass, wenn man einzelne amerikanische

Exemplare mit der europäischen Pflanze vergleicht, man versucht ist,

dabei verschiedene Species zu sehen, aber wenn man eine grosse

Anzahl amerikanischer Formen näher untersucht, wird man bald ge-

wahr, dass die Abweichungen in den verschiedenen Theilen der

Pflanze sich ohne Regelmässigkeit und Uebereinstimmung zeigen;

so zum Beispiel befinden sich die kürzeren und breiteren Zellen bald

bei kleineren Exemplaren mit dachziegelförmig gestellten Blättern,

bald auf stärkeren Pflanzen mit schwach gezähnten und an der

Spitze gebogenen Blättern. Man kann dieselbe Bemerkung machen

in Betreff der mehr oder weniger grossen Blattflügelzellen, welche

manchmal durchsichtig, manchmal halbdurchsichtig oder durch die

Granulation verdunkelt sind.

Unter diesen Exemplaren unterscheidet man als besondere

Species: B. biventrosum C. Müll.; B. Fitzgeraldi C. Müll. aus

Louisiana und aus Florida; B. digastrum C. Müll. und Kindb.

aus der Provinz Ontario, was mit dem B. laetum (Brid.) die

Zahl der für diese amerikanische Serie vorgeschlagenen Arten auf

4 bringt. |

Die beiden ersten zählen unter die diöcischen, die beiden letzten

unter die monöcischen, da C. Müller die Identität des amerikanischen

B. laetum mit dem diöcischen B. laetum von Europa zugegeben

hat, welches er B. Juteolum C. Müll, nennt. Die Art der Blüthen-

bildung ist bei den amerikanischen Species oft schwer zu erkennen.

Die zahlreichen Exemplare, welche wir erhalten haben, sind grössten-

theils unfruchtbar, was an sich schon keine wohl anerkannte Monöcität

anzugeben scheint; selbst bei den fruchtbaren Exemplaren haben

wir nur selten männliche Blüthen entdecken können; am häufigsten

haben wir dieselben diöcisch gefunden, oder wenigstens ohne männ-

liche Blüthen auf dem fruchtbaren Stengel. Befinden wir uns nicht

hier einer dem Hypnum fluitans L. ähnlichen Blüthenbildung

gegenüber, welches diöcisch wird durch das häufige oder selbst ge-

wöhnliche Fehlschlagen der männlichen Blüthen ?

Wir können also die ständige Monöcität des amerikanischen B.

laetum nicht zugeben, dessen Kapsel übrigens, wie bei den euro-

päischen Exemplaren, nach oben gerichtet ist, und es ist wahrschein-

lich, dass, wenn dieses letztere mehr verbreitet wäre, man auch

einige monöcische Exemplare finden würde.

310 F. Renauld und J. Cardot.

Den zahlreichen Abweichungen gegenüber, welche sich ohne

Regelmässigkeit zeigen, und der Unmöglichkeit, in welcher man sich

infolge dessen befindet, mit einiger Gewissheit eine grosse Anzahl

Exemplare auf die eine oder auf die andere der in der Gruppe

unterschiedenen Arten zurückzuführen, können wir in dem B. laetum

nur eine collectivische, sehr formenreiche Art erblicken, von welcher

einige wichtige Varietäten zu bemerken sind, besonders dann, wenn

sie den Habitus der einer Gegend eigenthümlichen Arten beeinflussen,

die indessen nicht specifisch geschieden werden können.

Diese Bemerkungen beziehen sich besonders auf das B. digastrum

C. Müller et Kindb. Wir kennen das B. Fitzgeraldi C. Müller

nur aus der Beschreibung, und wir haben in den Sammlungen von

Florida, welche unser Freund Fitzgerald uns im Jahre 1883 mitgetheilt

hat, nur Exemplare des B.laetum gefunden, mit stark gefalteten und an

der Basis ausgehöhlten Blättern, welche sich übrigens nicht von anderen

Formen des Nordens unterscheiden, die oft ebenso tiefe Falten haben.

Das B. biventrosum C. Müller, welches der Verfasser mit den

kleinen Formen des B. laetum vergleicht, ist uns von Lesquereux

in einem dürftigen unfruchtbaren Exemplar vorgelegt worden unter dem

Namen B. splendens Aust. Das ist eine kleine Form mit nicht sehr

stark gefalteten Blättern, die länglich oder fast dreieckig sind und allmäh-

lich in eine lange und dünne Blattspitze endigen; diese Blätter weichen

wenig ab von der gewöhnlichen Bildung derjenigen des B. laetum.

Isothecium myosuroides (L.) var. stoloniferum (Hook.).

Cascaden, Weston, No. 508. Durch ihre kräftige Gestalt und ihre

ziemlich kurz zugespitzten Aeste gehören diese Exemplare eher dem

H. stoloniferum Hook. als dem H. spiculiferum Mitt. an, auf

welches Herr Kindberg sie bezieht. Wir haben übrigens in der

„Hedwigia“ 1893, Heft 4, Seite 265—266 und in dem „Bulletin de

l’herb. Boissier‘“ 1896 Seite 9—10 die Gründe auseinandergesetzt,

welche uns bestimmen, diese zwei Exemplare mit dem I. myosu-

roides zu vereinigen, zu welchem wir ebenfalls das I. obtusatulum

Kindb., Röll No. 117 (Vancouver), welches kein besonderes Merkmal

zeigt, bringen müssen. (NB. Herr Kindberg [Rev. bryol. 1895. p. 83]

vergleicht dieses I. obtusatulum mit Thammium Holzingeri

Ren. u. Card., mit welchem es gar keine Achnlichkeit hat.)

In dieser, sowie auch in vielen anderen Gruppen zeigt Herr

Kindberg eine bedauernswerthe Neigung, nicht allein jede Varietät,

sondern auch selbst jede Uebergangsform zwischen den Varietäten

als Species zu betrachten, ein Verfahren, welches allerdings sehr

bequem ist, aber dessen wissenschaftlicher Werth uns mehr als

zweifelhaft erscheint.

Isothecium myosuroides (L.) var. stoloniferum (Hook.).

Oregon, Mt. Hood, No.1122. In Ermangelung eines Original-Exemplars

Pr eg - “ in ie a ie er E*; a TE En a N an ER PT Pa:

Ergänzende Bemerkungen etc. 311

ist es ziemlich schwer, zu wissen, was das H. aplocladum Mitt. in

Journ. Linn. Soc. VIII, pag. 39 sein kann, aber in allen Fällen ist

es uns ganz und gar unmöglich, zu verstehen, warum Herr Kindberg

die No. 1122 von Herrn Röll damit vereinigen will, welche im oberen

Theil stark gezähnte und auf dem Rücken gegen die Spitze zu

deutlich warzige Blätter hat, während Herr Mitten seinem H.

aplocladum ganz und gar glatte (quite smooth) und ganzrandige

Blätter (integerrimus) zuschreibt, da diejenigen am Ende der Aeste

allein etwas gezähnt sind. Die No. 1122 des Herrn Röll ist sicher-

lich nichts Anderes, als das I. myosuroides var. stoloniferum.

Eurhynchium strigosum (Hoffm.). Cascaden, Kahchess Lake

bei Easton No. 856. (E. substrigosum Kindb.) Der Verfasser

(Cat. Can. P. Musci pag. 205) schreibt seiner Art mit Bezug auf das

E. strigosum folgende Merkzeichen zu: Aeste entfernt stehend, flach;

Blätter lang herablaufend, zweimal grösser, fast zweizeilig,; Cilien des

Peristoms mit Anhängen, Infloresceenz monöcisch. Die No. 856 von

Herrn Röll, welche Herr Kindberg auf sein E. substrigosum zurückführt,

ist in der That kräftiger, als der europäische Typus, wie es übrigens alle

amerikanischen Exemplare sind, aber die Aeste sind nicht fernerstehend

und durchaus nicht verflacht, die Blätter sind nicht mehr herablaufend,

als bei dem europäischen Moos, und stehen gar nicht zweizeilig; die

Cilien des Peristoms sind einfach knotig, nur manchmal mit kurzen

Anhängen; es ist uns unmöglich gewesen, eine einzige männliche Blüthe

auf diesen Exemplaren zu entdecken; es folgt daraus, dass die No. 856

unter den Varietäten des E. strigosum stehen bleiben muss.

Amblystegium serpens (L.) subsp. A. Schlotthaueri Ren.

u. Card. Yellowstone Nat. Park No. 1550. Die aus der Form und

aus der Richtung der Kapsel entnommenen Merkzeichen (cfr. „Hed-

wigia‘ 1893, Heft 4, pag. 271) erlauben nicht, diese Abart ganz ein-

fach mit dem A. serpens zu vereinigen, wie Herr Kindberg es thut,

welcher wahrscheinlich die Kapsel nicht gesehen hat.

Hypnum ochraceum Turn. forma tenuis. Oregon, Mt.

Hood No. 1130 und 1131. Sehr mit Unrecht schreibt Herr Kindberg

diese zwei Nummern dem H. montanum Wils. zu; bei letzterem sind

die sehr abstehenden, fast sparrigen Blätter im oberen Theil deutlich

gezähnelt, während sie in dem Moos vom Mt. Hood aufrecht abstehen

und ganzrandig oder gegen die Spitze kaum leicht gezähnelt sind,

Es ist unmöglich, darin etwas Anderes zu sehen, als eine schmächtige

Varietät des H. ochraceum mit weniger deutlichen Blattflügelzellen.

Aehnliche Varietäten finden sich auch in Europa.

Vesoul (Hte. Saöne) und Stenay (Meuse), Mai 1896.

Uebersicht der auf Flechten

schmarotzenden Pilze.

Von Prof. Dr. W. Zopf in Halle.

Im Laufe der letzten sechs Jahre habe ich die in meinem Hand-

buch der Pilze gegebene Uebersicht der Flechtenparasiten nach den

alphabetisch geordneten Wirthspflanzen möglichst zu vervollständigen

gesucht.

Es geschah dies zunächst für die Zwecke einer mittlerweile in

Angriff genommenen und in ihrem ersten Theile schon demnächst

in den Nova Acta der Leopold. Akademie erscheinenden Monographie

dieser Schmarotzer. Schliesslich wollte es mir indessen scheinen,

als ob eine solche Zusammenstellung, versehen mit zur Erkennung

ausreichenden kurzen Diagnosen, auch Anderen nützlich werden

könne, und so entschloss ich mich, sie in dieser Zeitschrift zu ver-

öffentlichen.

Soweit die in Rede stehenden Öbjecte in den Sammelwerken

von Winter, Rehm, Schröter und Saccardo aufgenommen sind,

wurde auf dieselben als nächste zugängliche Quellen für Diagnose,

Literatur und Exsiccaten hingewiesen; im Uebrigen habe ich die

unten angegebene Specialliteratur benutzt.

Von den neuen Species wurden ebenfalls nur kurze Diagnosen

gegeben, da ausführliche, mit Abbildungen versehene Beschreibungen

in jener Monographie zu finden sind. Einige Arten blieben ohne

Diagnosen, weil mir dieselben nicht zugänglich waren.

Literatur.

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Akademiens Handlingar. Ny Följd. Band 17 (1879). 69 Seiten 4.

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Comum coll. et in ord. syst. digessit. Novi-Comi 1860. p. 115—116.

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München.

— Lichenologische Fragmente I-NXXXV. In verschiedenen Jahrgängen der

Flora und der Östreich-botanischen Zeitschrift Wien.

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Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 313

Baglietto, F. et Carestia, A. Alcuni licheni nuovi dell’ alta Valsesia. Commen-

tario della soc. crittogamologica italiana. Vol. II. (Genova 1864) p. 82—85.

Citirt als: Baglietto et Carestia.

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— Lichenes Spitsbergenses. Kongl. Svenska Vetenskaps-Akademiens Handlingar

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Lahm, 6. Zusammenstellung der in Westphalen beobachteten Flechten. Münster 1885.

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Lindsay, W. L. I. Observations on New Lichenicolous Micro-Fungi. Transaction

of the Royal Society of Edinburgh. Vol. XXV. (1868—1869) p. 513— 555.

Mit 2 Tafeln.

— II, Observations on Lichenicolous Micro-Parasites. Quart. Journ. of microsc.

science New ser. vol. XI. p. 28—42 (1871).

— II. Arthonia melaspermella. Journ. of Linn. Soc. Vol. IX. p. 268.

— IV. Otago Lichens and Fungi Trans. of Royal Soc. of Edinburgh Vol. XXIV.

p. 434.

— V, Observations on W.Greenland Lichens. Transact. Linneau Soc. Vol. XXVIH.

— VI. Parasitic Micro-Lichens. Quart. Journ. of Micr. science 1869.

— VII. Memoir on the Spermogones and Pycnides of Filamentous Fruticulose

and Foliaceous Lichens. Transact. Royal Soc. of Edinbourg Vol. XXI.

— VII. Memoir on the: Spermogones and Pycnides of Crustaceous Lichens.

Transact. Linn. Soc. London Vol. XXVIH.

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et d’hist. nat. de Geneve. t. XVI.

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Bd. I, Abth. I, Citirt als: W.

Acarospora cervina s. A. fuscata.

Acarospora chlorophana (Whlbg.).

Leciographa convexa (Th. Fr. Arct. 334. Spitzb. 44).

Apothecien schwarz, anfangs berandet, später randlos, convex.

Schläuche 8sporig, bauchig-keulig, Paraphysen locker, an der Spitze

mit brauner kopfiger Anschwellung. Sporen länglich, öfter gekrümmt,

4zellig, braun, 16—22:6—7. Hymenium durch Jod blau.

Acarospora fuscata (Schrad.).

Endococcus microsticticus (Leight.). Arn. W. 430 (sub

Didymosphaeria).

Perithecien eingesenkt, schwarz, Schläuche 8sporig. Sporen

dunkel, zweizellig, 14:7, Paraphysen.

Pharcidia lichenum Arn, W.343 f. fuscatae Arnold VIII 302.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

farblos, zweizellig, 9—12:4—5; ohne Paraphysen.

Acarospora glaucocarpa (Whlbg.).

Rosellinia alpestris Zopf. Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, schwarz, ellipsoid, 0,1—0,3 mm breit.

Schläuche bauchig, sehr kurz gestielt, 8sporig, 45—50 : 22—25. Sporen

einzellig, ellipsoid. bis bohnenförmig, dunkelbraun, 12—16:7,5—9. Para-

physen feinfädig, spärlich verzweigt. Schlauchwand durch Jod roth.

Acarospora percaena (Mudd).

Tichothecium pygmaeum Kbr. vergl. Aspicilia alpina,

Acarospora Veronensis Mass.

Tichothecium pygmaeum Körb. vide Aspicilia alpina.

Anaptychia eiliaris (L.). Auf Thallus und Früchten.

Nectria Fuckelii Sacc. W. 121.

Orangerothe Perithecien, Schläuche 8sporig, Sporen gleich-zwei-

zellig, farblos, 26:5.

Pharcidia Hageniae Rehm. W. 344,

Braune Perithecien, Schläuche 8sporig, Sporen ungleich-zweizellig,

farblos, 12—15:4—5. Paraphysen fehlen.

Arthonia astroidea Hepp.

Müllerella haplotella (Nyl. Flora 1867, 180) Arnold. Hue

No. 1899,

Perithecien schwarz, Schläuche vielsporig, Sporen einzellig, dunkel,

ellipsoid, 4—-7:2,5—3. Paraphysen fehlend.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 315

Pharcidia Arthoniae (Arn.) W. 344.

Perithecien braun, Schläuche 8sporig, Sporen ceylindrisch, ein- bis

zweizellig, farblos, 18—23:5. Paraphysen fehlend.

Aspieilia alpina (Smilt.).

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf den Apo-

thecien.

Perithecien schwarz, Schläuche bauchig, vielsporig, Sporen braun,

ellipsoidisch, zweizellig, 5-7 :3,6.

Tichothecium gemmiferum Tayl. W.350. Auf dem Thallus.

Schläuche keulig, 8sporig. Sporen zweizellig, braun, 6—-8:3—3,6.

Müllerella thallophila Arnold. vide Aspicilia caesio-cinerea,

Aspieilia aquatica (Fr.).

Tichothecium gemmiferum (Tayl.) W. 350. Auf dem

Thallus.

Perithecien schwarz, Schläuche keulig, 8sporig. Sporen ellip-

soidisch, stumpf, zweizellig, braun, 8—12:3—4

Aspieilia caesio-cinerea Nyl.

Müllerella thallophila Arnold Flora 1888 u. Exs. 1385.

Perithecien schr klein, eingesenkt. Schläuche keulig, von

Paraphysen weit überragt, 24— 44sporig. Sporen einzellig, braun,

7—12,5 : 4,2 —- 5,3.

Aspieilia calcarea (L..).

1. Pyrenomyceten.

Tichothecium pygmaeum Körber. W. 349. Auf dem Thallus.

Schläuche vielsporig, Sporen zweizellig, breit, ellipsoidisch,

6—8:3—3,5, braun.

Tichothecium calcaricolum (Mudd) W. 350. Auf dem

Thallus.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, ellipsoid bis länglich,

15 — 20 :6—7, braun.

Epicymatia lichenicola (Mass.) Sacc. I 573. Auf den

Apothecien.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, farblos, mehr oder

weniger gekrümmt, 18—24 :6—6,5.

Placidium insulare Massal. Sertum lichenologicum in L.otos,.

Prag 1856. N

Pharcidia Aspiciliae (Lahm) W. 346. Auf dem Thallus.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, farblos, 3—4 mal so lang

als breit. ;

2, Discomyceten.

Karschia saxatilis (Schaer.) Rehm 350.

Sporen braun, zweizellig, 10—12:4—5. Epithecium u. Hypo-

thecium braungrün, durch Aetzkali braun.

316 W. Zopf.

Scutula episema (Nyl.) Zopf. Auf den Thallusareolen.

Apothecien schwarz, meist in Gruppen, deutlich berandet,

0,24—0,5 mm. Schläuche 8 sporig. Paraphysenenden kopfig, span-

grün gefärbt. Sporen zweizellig, ellipsoidisch oder spindelig, farblos,

6,6—10,5:3,9-—4,6. Hypothecium rothbraun.

Scutula Aspiciliae (Müll.) Rehm 326.

Sporen farblos, zweizellig, 10—14:4— 4,5. Epithecium und

Hypothecium violettbraun bis braun.

Leciographa monspeliensis (Nyl.) Rehm 380.

Sporen braun, vierzellig, 15—20:7--9. Epithecium braungelb,

Hypoth. braun, Apothecien Opegrapha-ähnlich, 0,5—1:0,2--0,5 mm,

Leciographa centrifuga (Mass.) Rehm 381.

Sporen braun, vierzellig, 15—16:5—-6. Epithecium olivenbraun,

Hypoth. rothbraun. Opegrapha-ähnliche Apothecien, 0,2- 0,5:0,2 mm,

Aspieilia einerea (1..).

Tichothecium calcaricolum (Mudd) W. 350.

Schläuche 8 sporig, Sporen zweizellig, braun, ellipsoidisch -läng-

lich, 15—21 : 6—7.

Tichothecium perpusillum (Nyl.) W. 351.

Schläuche 8 sporig, Sporen zweizellig, braun, 15—21 :6—-7.

Tichothecium gemmiferum Tayl. W. 350.

Wie vorige, aber Sporen 8—12:3—4,

Müllerella haplospora (Th. Fr. et Almq. Bot. Not. 1867, 109).

Schläuche vielsporig. Sporen einzellig, braun.

Rosellinia aspera Haszl. Hedwigia 1874. Sacc. I. 275.

Schläuche schmal, cylindrisch., Sporen 8, braun, einzellig,

19—20::12—13. Paraphysen.

Aspieilia einerea var. alba.

Sphaeria verrucicola (Weddell, Agde 21).

Perithecien 0,05— 0,1 mm im Durchmesser, eingesenkt, schwarz.

Paraphysen fehlend. Schläuche 8sporig. Sporen einzellig, ellipsoidisch,

farblos, 18—30 : 10—15.

Aspieilia einerea f. alpina s. A. alpina.

Aspieilia einero-rufesceens (Ach.).

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Aspicilia alpina.

Aspieilia complanata (Körb.).

Tichothecium complanatae Arnold W. 352.

Perithecien sehr klein, punktförmig schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen spindelförmig, zweizellig, braun, 15--17:4--5. Paraphysen

fehlend.

Bei: Aa NE le ne ee er

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze, 317

Aspieilia gibbosa (Ach.).

Tichothecium calcaricolum (Mudd) W. 350.

Perithecien sitzend, schwarz. Schläuche 8sporig. Schlauchwand

durch Jod roth. Sporen zweizellig, braun, 19— 20:6, bei norwegischen

Exemplaren nach Arnold 15—18:6—7. Paraphysen fehlen.

Tichothecium perpusillum (Nyl.) W, 351.

Perithecien eingesenkt. Sporen 15—21:6—7. Schläuche 8sporig.

Tichothecium gemmiferum (Tayl.). S. Aspicilia aquatica.

Aspicilia lacustris (With.).

Pharcidia lacustris (Arnold Tirol XXV).

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, farblos, 27— 30 :9—11.

Aspieilia laevata Ach. f. albicans Arnold.

Didymosphaeria sphinctrinoides (Zwack) f. aspiciliicola

Zopf. Auf Thallus und Apothecien.

Perithecien punktförmig, gehäuft. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, farblos, 18,4—21,4 :6,6— 7,6. Paraphysen feinfädig.

Aspieilia mutabilis.

Physalospora (?) psoromoides (Borr.) W. 415.

Perithecien gesellig, dem Thallus eingesenkt, schwarz. Schläuche

8sporig. Sporen farblos, einzellig, 12—14:5.

Aspicilia Myrini (Fr.) i. subadunans,

Physalospora Aspiciliae (Wainio Adj. II. 179).

Schläuche cylindrisch bis keulig. Paraphysen fein, locker. Sporen

8, einfach, farblos, ellipsoidisch bis länglich, 10—17:5—7. Schläuche

durch Jod bläulich.

Aspieilia polychroma Anzi.

Mit Apothecien: Karschia leptolepis Bagl. Rehm 354.

Epithecium dick, braunschwarz, Hypothecium fast farblos. Sporen

8, kugelig-ellipsoid, 6— 9: 4—-6.

Mit Perithecien: Didymosphaeria epipolytropa (Mudd)

W, 432. Arnold München 131.

Perithecien smaragdgrün, Paraphysen fein, Sporen zu 4—8,

farblos, zweizellig, 21—27 :5—6.

Aspicilia verrucosa (Ach.).

Sphaerella araneosa Rehm W. 356.

Perithecien schwarz, kugelig, einem braunen Mycel entspringend.

Schläuche birnförmig, 8sporig. Sporen zweizellig, bräunlich,

. 12—14:6—7. Paraphysen fehlend.

Cercidospora verrucosaria Linds.. Enum. 27. Arnold

Flora 1890. 48.

Paraphysen feinfädig, Sporen zweizellig, farblos, 15—17:5, zu

8 in cylindrischen Schläuchen.

318 W. Zopf.

Bacidia inundata (Fr.).

Arthonia exilis Fl. f. inundata Wainio Adi. II. 162.

Apothecien randlos, Schläuche birnförmig. Sporen 8, zweizellig,

farblos, 9—11: 3—4.

Baeidia rubella (Pers.) f. luteola (Schrad.).

Müllerella polyspora Hepp. W. 354.

Perithecien schwarz, eingesenkt, nur mit dem breiten Scheitel

hervorragend, ',—'!k mm breit. Schläuche vielsporig. Sporen ein-

zellig, braun 5—7:2—2,5. Paraphysen gallertig.

Baeomyces placophyllus s. Sphyridium pl.

Baeomyces roseus (Pers.).

Nesolechia inquinans (Tul.) Rehm 320. Auf dem Thallus.

Sporen einzellig, farblos, 9,6—12,8:4,8-—6,5. Paraphysen ver-

klebt. Hypothecium dunkelbraun.

Celidium ericetorum (Fw.) Rehm 431. Schroet. II. 136. Auf

dem Thallus.

Sporen vierzellig, farblos, 10-—-15:3. Paraphysen nicht verklebt.

Hypothecium farblos. Epithecium grünlich.

Baeomyces rufus s. Sphyridium byssoides,

Biatora Berengeriana Mass.

Endococcus Berengerianus Arnold W. 348. Thallusbe-

wohner.

Perithecien sehr klein, schwarz, kugelig. Mit Paraphysen.

Schläuche 8 sporig. Sporen zweizellig, farblos, 22—28 :5—6.

Biatora coaretata (Sm.).

Physalospora microthelia (Wallr.) W. 415. Auf dem

Thallus.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Sporen zu 8, eiförmig, einzellig.

farblos, 12—15 :6—7.

Biatora commutata s. Biatorina c.

Biatora euprea Hepp s. Bilimbia cupreorosella.

Biatora decolorans Ach.

P’haeospora decolorans Rehm W. 353. Auf dem Thallus.

Perithecien sitzend, winzig, schwarz. Schläuche 8 sporig, Sporen

2—4 zellig, ellipsoid, braun, 12:4.

Phaeospora granulosae Arnold Exs. 1564.

Biatora luteola s. Bacidia rubella f. luteola.

Biatora pineti s. Biatorina diluta.

Biatora rupestris (Scop.).

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 319

Biatora vernalis (L.).

Leciographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 377. Auf dem

Thallus.

Schwarze berandete Apothecien. Schläuche 8sporig. Sporen

4—38 zellig, braun, 15— 23: 5—6.

Mycoporum consocians Nyl. Flora 1872. 364. Auf dem

Thallus.

Schwarze Perithecien. Sporen 8, vierzellig, schwärzlich,

10—11 :5—6.

Biatorina commutata (Ach.).

Pseudotryblidium Neesii (Fw.) Schröter II. 148. Auf dem

Thallus.

Schwarze Apothecien. Schläuche 8sporig, Sporen 2—4 zellig,

braun, 15—18:6--8. Paraphysenenden braun.

Biatorina cyrtella s. Dimerospora c.

Biatorina diluta (Pers.).

Karschia lignyota (Fr.).

Schwarzgrüne Apothecien. Schläuche 8sporig. Sporen zwei-

zellig, braun, 9—12:4—5.

A. Perithecien mit Paraphysen.

Didymosphaeria epipolytropa (Mudd) W. 432. Auf dem

Thallus und der Fruchtscheibe.

Schläuche cylindrisch - keulig, 4—8 sporig. Sporen zweizellig,

farblos, 15—18:4—5.

B. Perithecien ohne Paraphysen.

Pharcidia dispersa (Lahm) W. 346. Auf dem Thallus.

Schläuche cylindrisch-keulig, 8sporig. Sporen zweizellig, farblos,

13—15 :4—5.

Tichothecium microcarpon Arnold Tirol XIV. 477. Auf

den Apothecien.

Schläuche 20 sporig, Sporen zweizellig, braun, 5—6:2—3,

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Schläuche bauchig, vielsporig. Sporen braun, zweizellig,

6—8:3—3,5.

Tichothecium gemmiferum Tayl. W. 350. Auf dem

Thallus.

Schläuche 8sporig. Sporen ellipsoid, zweizellig, braun, 8-12:3—4.

Biatorina eyrtella s. Dimerospora c.

Biatorina lenticularis (Fw.).

Tichothecium gemmiferum Tayl. s. Biatora rupestris,

320 W. Zopf.

Bilimbia microcarpa Th. Fr.

Leciographa urceolata (Ih. Fr.) Rehm 377. f. sodalis

Wainio Adjum. II. 122.

Schwarze Apothecien. Schläuche 8 sporig. Sporen 4— 8zellig,

13—20 :4—6,

Phaeospora triplicantis (Wainio Adjum. II. 203).

Schwarze Perithecien. Paraphysen fehlend. Schläuche 8 sporig.

Sporen 4—6 zellig, 14—20 : 6—7.

Bilimbia mierocarpa f. rhypara Wainio.

Dactylospora Lamyi (Rich.) Arnold f. triplicantis Wainio

Adjum. II. 119.

Schwarze Apothecien. Schläuche 8 sporig. Sporen vierzellig,

14—20:5—7. Schlauchschicht durch Jod blau.

Bilimbia obseurata (Smilt.).

L.ectographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 377.

Schwarze berandete Apothecien. _Schläuche keulig, 8sporig.

Sporen 4—8zellig, braun, 15—23:5—6.

Bilimbia sphaeroides (Dicks.).

Leciographa parasitaster Nyl. Rehm 378.

Apothecien schwarz, Schläuche 8sporig. Sporen 4—8zellig, braun,

15—18:5—7 (nach Arnold bis 27 u lang).

Bilimbia tripliecans Nyl. s. B. microcarpa.

Blastenia arenaria (Pers.).

Buellia (?) tegularum Arnold Rehm 1223. Auf dem Thallus.

Schwarze Apothecien. Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig,

braun, 10—12:5—7. Epithecium dunkel-, Hypothecium hellbraun.

Blastenia ferruginea s. Callopisma f.

Blastenia lamprocheila DC. s. Callopisma ferrugineum.

Buellia alboatra s. Diplotomma a.

Buellia myriocarpa (DC.).

Arthonia epimela Norm. Almq. Mon. Arth. 56. Auf dem

Thallus.

Apothecien schwarz. Epithecium dick, schwarz. Schläuche

8sporig. Sporen eiförmig-länglich, farblos 9—13 : 3,5—4,5. Sperma-

. tien länglich-cylindrisch, 4—5 ı.

Karschia thallophila (Öhlert) vergl. Physcia obscura.

Buellia parasema (Ach.).

Melaspilea rhododendri (Arnold u. Rehm) Rehm 365.

Apothecien lirellenförmig, Schläuche 8sporig. Sporen 2—4zellig,

12—15 : 6—7 (die vierzelligen 18—20 lang).

Buellia rivularis s. Catocarpus r.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 321

Callopisma Agardhianum (Ach.).

Tichothecium pygmaeum Körber s. folgende.

Callopisma aurantiacum (Lightf.).

Tichothecium pygmaeum Körb. var. microcarpa Arnold.

W. 349. Auf den Apothecien.

Früchtchen schwarz. Schläuche ca. 20sporig. Sporen 5—6:2—3,

Callopisma cerinum (Ehrh.).

Tichothecium pygmaeum Körb. var. microcarpa Arnold

(s. vorstehende Art). (= Sphaecia cerinaria Mudd? Man. 1861 136.)

Callopisma chalybaeum (Fr.).

Leciographa centrifuga (Mass.) Rehm 381. Auf dem Thallus.

Rundliche oder verlängert ellipsoide Apothecien. Schläuche

8sporig. Sporen vierzellig, braun, 15— 16: 5—6.

Callopisma ferrugineum (Huds.).

Pharcidia dispersa (Lahm) W. 346. Auf dem Thallus.

Perithecien sehr klein, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, farblos, 13—15 : 4—5.

Leciographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 377. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen 4—8 zellig,

15— 23 :5—6.

Tichothecium microcarpon Arnold. W. 349,

Perithecien schwarz. Schläuche ca. 20 sporig. Sporen 5—6:2—3,

Callopisma flavovirescens (Hoffm.).

Tichothecium microcarpon Arnold s. Callop. pyraceum.

Callopisma luteo-album Körber s. C. pyraceum.

Callopisma pyraceum (Ach.).

Tichothecium microcarpon (Arnold) W. 349. Auf den

Apothecien.

Perithecien sehr klein, schwarz. Schläuche ca. 20 sporig. Sporen

5—6:2—3, zweizellig, braun, ellipsoidisch. Paraphysen fehlend.

Callopisma rubellianum (Ach.).

Tichothecium gemmiferum (Tayl.) s. Aspicilia aquatica.

Callopisma salieinum (Schrad.).

Tichothecium microcarpon Arn. W, 349 s. andere Callo-

pisma-Arten.

Callopisma teicholytum (Ach.) s. Blastenia arenaria.

Callopisma vitellinum (Ehrh.).

Nesolechia vitellinaria (Nyl.) Rehm 319. Auf den Früchten.

Apothecien schwarz. Schläuche 8sporig. _ Sporen einzellig,

farblos, 7—10 : 5—6.

Caloplaca aurantiaca s. Callopisma a.

Candelaria vitellina Mass. s. Callopisma v.

Hedwigia Ba, AXXV, 1890. 21

322 W, Zopf.

Gatocarpus alpicolus (Whlbg.).

Tichothecium pygmacum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Perithecien am Rande der Areolen. Schläuche bauchig, vielsporig.

Sporen zahlreich, kurzellipsoidisch, braun, zweizellig, 6—-8:3—3,5.

Tichothecium Stigma Körb. W. 351. Auf den Thallus-

schollen.

Perithecien als feinste Pünktchen auf den Areolen auftretend.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, braun, 14— 20 :5—6. Schlauch-

wand durch Jod nicht roth.

Tichothecium macrosporum Hepp. W. 352. Auf dem

Thallus.

Wie vorige, aber Schlauchwände durch Jod roth.

Catocarpus atroalbus (Wulf.) — Rhizocarpon a.

Gatocarpus econfervoides Krmphb. s. Catocarp. polycarpus.

Gatocarpus polycarpus (Hepp).

Phaeospora peregrina (Flotow Bot. Zeit. 1855 sub Verrucaria).

Auf dem Thallus.

Perithecien punktförmig, schwarz, eingesenkt, nur mit dem

Scheitel hervorragend. Schläuche 8 sporig. Sporen oblong, vierzellig,

braun, 15:4,5—5. Paraphysen fehlend.

Catocarpus rivularis (Fw.).

Pharcidia hygrophila (Arnold) W. 348. Auf dem Thallus.

Schwarze, sehr kleine Perithecien. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, farblos, 15—18:5—-6. Paraphysen fehlen.

Catopyrenium einereum (Pers.).

Verrucaria (?) nigritella Nyl. Leight. Brit. 497. Auf dem

Thallus.

Perithecien schwarz, Paraphysen fehlend. Sporen zu 8, braun,

mehrtheilig (z. Th. mauerförmig), 21— 36 :9—14.

Catopyrenium Waltheri Krphb.

Thelocarpon impressellum Nyl. Flora 1867. 179.

Apothecien gelbgrün, Schläuche vielsporig, Sporen farblos, ellip-

soid, 68:3 - 4,5.

Cetraria glauea (1..).

Abrothallus Parmeliarum (Smflt.) Rehm 360. Auf dem

Thallus.

Apothecien dunkelbraun, häufig grau oder gelbgrün bereift.

Schläuche 6—8sporig. Sporen zweizellig, dunkel, 10—17:4—5.

Epithecium braun oder braungrün. Hypothecium ebenso.

Abrothallus Parmeliarum f. olivascens Wainio Adj. II. 119,

Apothecien smaragd- oder olivengrün-braun, Sporen 12—14:5—6,

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 323

Nesolechia oxyspora (Tul.) Rehm 316.

Apothecien schwarzbraun, Schläuche 6—8 sporig. Sporen ellip-

soid, beiderseits zugespitzt, einzellig, farblos bis blassgelblich,

15—22:5—7. Epithecium hellbraun, Hypothecium fast farblos.

Cetraria islandica (L.).

Metasphaeria cetraricola (Nyl.) Sacc. II. 184.

Perithecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich,

2—4 zellig, hyalin. Paraphysen fehlen.

Abrothallus Parmeliarum (Smft.) Rehm III. 360.

Apothecien dunkelbraun, häufig grau oder gelbgrün bereift.

Schläuche 6—8sporig. Sporen zweizellig, dunkel, 10—17:4—5. Auch

Pycniden vorhanden.

Cetraria pinastri (Scop.).

Abrothallus Parmeliarum (Smiflt.) f. Peyritschii Stein. Fl.

Schles. 211. Rehm 360. Siehe Cetraria glauca.

Cladonia aleicornis Lghtf.

Microthelia alcicorniaria Lindsay Enum. 27. (Pycniden!).

Cladonia bellidiflora (Ach.).

Nesolechia Cladoniaria (Nyl. Enum. Suppl. 339. Leighton

p. 388).

Apothecien winzig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen ein-

zellig, farblos (bisweilen braun), 10:3,5. Hypothecium im unteren

Theile schwärzlich. .

CGladonia deformis (L.).

Rosellinia Cladoniae (Anzi) Sacc. I. 275. Auf den Podetien.

Perithecien schwarz, kugelig, halb eingesenkt. Schläuche

4-6 sporig. Sporen kahnförmig, einzellig, dunkel, 22—30 : 13—15.

Calycium parasitaster Bagl. et Car. Rehm 407.

Apothecien kurz und fein gestielt, mit flacher Furchtscheibe,

schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen elliptisch, bisweilen gekrümmt,

bräunlich, 7—9 :3—4.

Cladonia digitata (L.).

Nesolechia oxysporella (Nyl.) Arnold Flora 1888. 111. Auf

dem Thallus.

Apothecien schwarz, hervorbrechend. Epithecium schmutzig-

braun. Hypothecium farblos, dann blassgelb. Schlauchschicht mit

Jod blau. Paraphysen verklebt. Sporen 8, einzellig, farblos, 5—6: 2,5.

Cladonia extensa.

Nesolechia oxysporella (Nyl.) Rehm 316 s. Clad. fimbriata.

Cladonia fastigiata Del.

Sphaeria cetrariicola Nyl.

324 W. Zopf.

Cladonia fimbriata (L.).

Nesolechia oxysporella (Nyl.) Rehm 316. Auf dem Thallus.

Apothecien gesellig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen ein-

zellig, länglich-spindelig, farblos, 6—8: 2.

Cladonia fimbriata (I..) var. subulif.

Patellea cladoniella (Nyl.) Richard. Lich, Deux Sevres

1878. 42.

Cladonia pyxidata (L.).

Celidium pulvinatum (Rehm 427). Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, Schläuche länglich-keulig, 8sporig. Sporen

länglich oder ellipsoidisch, 3—4zellig, schwarzbraun, 18—24:4—7.

Epithecium und Hypothecium dunkelbraun.

Celidium #epidophilum (Anzi). Rehm 427. Aufdem Thallus.

Sporen farblos, 2—4 zellig, 10—15 :3—.

Cladonia pyxidata (1.) f. pocillum.

Lecidea epicladonia Nyl. Flora 1887, 132. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, unberandet ca. 0,2 mm breit, Schläuche

8sporig. Sporen oblong, zweizellig, 11—16 :3,5—4,5. Hypothecium

braun. Jod färbt die Schläuche blau, dann roth. Spermatien leicht

gekrümmt, 10—11:5.

CGladonia uneialis (Hoffm.).

Nesolechia Cladoniaria Nyl, vergl. Clad. bellidiflora.

Phyllosticta uncialicola Zopf.

Anschwellungen an den Podetien bewirkend. Conidien einzellig,

farblos, ei- oder birnförmig, 8,4:5.

Auf anderen Cladonien:

Nesolechia oxysporella (Nyl.) Rehm 316.

Apothecien schwarz, Schläuche 8sporig. Sporen länglich-spindelig,

einzellig, farblos, 6— 8:2.

Rosellinia Tulasnei (Crouan) Sacc. I. 276.

Perithecien birnförmig, schwarz. Schläuche 2sporig. Sporen

etwa spindelig, braun.

Collema aurieulatum Hoffm.

Leptosphaeria dolichotera (Nyl.). Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Paraphysen fehlend. Schläuche

8sporig. Sporen cylindrisch-länglich, 4—-6 zellig, farblos.

Collema eristatum (L.).

Tichothecium Collemarium (Linds. Enum. 28).

Collema granosum s. C. auriculatum.

Collema furvum Ach.

Physalospora Collemae (Stein) W. 414. Auf der Frucht-

scheibe.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 325

Perithecien kugelig, ganz eingesenkt, schwarz. Schläuche walzig,

8sporig. Sporen ellipsoid oder eiförmig, 12—16:8—10.

Collema melaenum s. ©. cristatum.

Dacampia Hookeri Borr.

Pharcidia Schaereri (Mass.) W. 343. Auf dem Thallus.

Perithecien birnförmig, schliesslich hervortretend. Schläuche

8sporig. Sporen keulen- oder stäbchenförmig, 2—4#zellig, hyalin,

12—14:3—3,5 (nach Arnold 15—18). Paraphysen fehlend.

Pharcidia rhyparella (Nyl.) Flora 1870. 38. (Mit voriger

identisch?)

Perithecien schwarz, etwas vorragend. Sporen eiförmig, zwei-

zellig, 11—14:5—6. Schlauchschicht durch Jod nicht gefärbt.

Pharcidia innatula (Nyl.) Flora 1865. 358.

Perithecien schwarz, eingesenkt. Sporen eiförmig, zweizellig,

18—23 :8—11.

Dimelaena nimbosa Fr.

Pharcidia conspurcans (Fr.) W. 347.

Perithecien halb eingesenkt, schwarz. Sporen 8, zweizellig, farb-

los, 10—14:5. Paraphysen fehlen.

Dimerospora eyrtella (Ach.).

Pharcidia punctillum (Arnold) W. 345.

Perithecien schwärzlich. Schläuche 8sporig. Sporen länglich-

keulig, zweizellig, farblos, 14—18: 3,5—5.

Diplotomma alboatrum (Hoffm.).

Conida punctella (Nyl.) Rehm 423. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, von einem „Schleier“ überzogen. Schläuche

birnförmig, 8sporig. Sporen eiförmig-länglich, zweizellig, sich schwach

bräunend, 13—15,5:6-—-7. Hypothecium dunkelbraun, Epithecium

braun, Schleier durch Jod blau. Schlauchwand durch Jod nicht blau,

Conida rubescens Arnold.

Wie vorige, aber Sporen farblos, 16—18—21 :9—10,7. Hypo-

thecium farblos. Schleier durch Jod roth, ebenso die Schlauchwand.

Diplotomma caleareum s. Rhizocarpon calcareum.

Diplotomma epipolium (Ach.) s. Diplot. alboatrum.

Diplotomma porphyrieum Arn.

Conida punctella (Nyl.) s. Diplot. alboatrum.

Diplotomma Weissii s. Rhizocarpon calcareum.

Evernia furfuracea (L.).

Nesolechia oxyspora (Tul.) Rehm 316. Auf dem Thallus.

Apothecien zuerst eingesenkt, dann hervorbrechend, schwarz-

braun. Schläuche 6—-8 sporig. Sporen einzellig, beiderseits zugespitzt,

15—22:5—7, Paraphysen oben stark verbreitert.

326 W. Zopf.

Evernia prunastri (L.).

Microthelia prunastraria Lindsay Enum. 27.

Evernia vulpina (1..).

Phacopsis vulpina Tul. Rehm 420.

Apothecien gesellig, erst eingesenkt, dann hervorbrechend,

schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich-ellipsoidisch, stumpf,

einzellig, farblos, 13—16 : 46,

Endocarpon Loseosi.

Sphaerella dealbans Müller Flora 1872, 507. Auf dem

Thallus, diesen bleichend.

Perithecien eingesenkt, dann etwas vorragend, 0,2 mm breit,

schwarz. Paraphysen fehlend. Schläuche 8sporig. Sporen cylindrisch-

eiförmig, zweizellig, farblos, 14—18 u lang.

Endocarpon miniatum (1..).

Celidium pulvinatum Rehm 427.

Apothecien schwarz, Schläuche länglich-keulig, Ssporig. Sporen

elliptisch oder länglich, 3—4zellig, braun, 18—24:4- 7.

Endocarpon hepaticum (Ach.) s. Endopyrenium trapeziforme,

Endocarpon viride s. Lenormandia viridis,

Endopyrenium trapeziforme (Müll.).

Celidium endocarpicolum Linds. Observ. 547.

Sphaeria perigena Nyl. Flora 1878, 341. Hue Add. 327.

Schläuche 8sporig. Sporen spindelförmig, zweizellig, farblos,

18—23:6—7. Paraphysen.

Ephebe pubescens (L.).

Nectria affinis (Grev.) Sacc. II. 500.

Perithecien orangegelb, kugelig, glatt. Schläuche cylindrisch.

Sporen zweizellig, ellipsoidisch, 12 u lang.

Fritzea lamprophora s. Psora lampr.

Gasparrinia australis.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349,

Perithecien schwarz. Schläuche vielsporig. Sporen braun, ellip-

soidisch, zweizellig, 5—7:3-—-6.

Gasparrinia elegans (Lk.).

Endococcus sphinctrinoides Zwackh. W. 432. Auf den

Apothecien und dem Thallus.

Perithecien anfangs eingesenkt, später hervortretend, kugelig oder

eiförmig, schwarz. Schläuche 4-6 - 8sporig. Sporen verlängertbirn-

förmig, zweizellig, farblos, 17,8--23:7,1—8. Paraphysen feinfädig.

“

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 397

Leciographa convexa (Th. Fr. Arct. 334). Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, Schläuche bauchig-keulig, 8sporig. Sporen

vierzellig, braun, 16—22:6—7. Hymenium durch Jod blau.

Leciographa nivalis Bagl. et Car. Comm. crit. II. 84. Auf

dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, berandet, dann hervortretend, unberandet,

convex, schwarz, rund. Schläuche 6—8sporig. Paraphysen oben braun.

Sporen ellipsoidisch-eiförmig bis nierenförmig, 8$—10zellig, braun.

Pharcidia Guinetii (Müll. Arg.) Stitzenb. Lich. helv. 1882, 257.

Tichothecium pygmaeum Körb.W.349,s. Gasparrinia australis.

Gasparrinia murorum (Hoffm.).

Conida clemens (Tul.) Rehm 421. Auf der Fruchtscheibe.

Apothecien schwarz. Schläuche birnförmig, 8sporig. Sporen

keulig oder eiförmig, zweizellig, die untere Zelle verschmälert, farblos,

10—15 :3—5.

Arthopyrenia Amphilomatis Jatta Lich. ital. merid. 1889, 206.

Graphis seripta (L.).

Pharcidia microspila (Körb.) W. 346. Auf dem Thallus.

Perithecien schwarz, gesellig, auf 2—3 mm breiten grauschwarzen

Flecken sitzend. Schläuche 8sporig. Sporen cylindrisch-keilförmig,

zwei- (selten vier-)zellig, hyalin, 15—17 :4—5.

Gyalolechia aurella (Hotffm.).

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Aspicilia alpina.

Gyalolechia eallopisma (Ach.). Auf dem Thallus:

1. Cercidospora epicallopisma Arn. Fragm. 25 in Flora

1881 No. 20. Orangerothe Perithecien, 4sporige Schläuche.

Sporen zweizellig, hyalin, 15—18:4.

2. Phaeospora epicallopisma (Weddel nouv. revue des

Lich. 1873, 22 sub Verrucaria) Arnold. Schwarze Perithecien.

Sporen braun, zweizellig.

Gyalolechia epixantha (Ach.) s. G. aurella.

Gyrophora arectica Ach.

Homostegia lichenum (Somflt.) Sacc. II. 649. Auf dem

Thallus.

Perithecien in ein Stroma eingesenkt. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, braun, 16:6. (Spermatien cylindrisch, gekrümmt, zwei-

zellig, 16:2"); nach Fuckel.)

Tichothecium grossum Körb. Parerg. 469.

Perithecien hirsekorngross. Sporen in kurzen, keuligen Schläuchen

6-8, sohlenförmig, zweizellig, braun, 2—3 mal so lang als breit.

Gyrophora cylindrica (L.).

Pharcidia Gyrophorae (Arnold). Auf dem Thallus.

328 W. Zopf.

Perithecien eingesenkt, 0,1--0,16:: 0,08—0,13 mm. Paraphysen

fehlen. Schläuche breit, kaum gestielt, 4—8sporig. Sporen zweizellig,

im Alter bräunlich, 13—17,9:7,1-—8.

Gyrophora polyphylla (L..).

Melanothecaapogyra Nyl.Flora1887,132, Aufden Apothecien.

Gyrophora spodochroa (Ehrh.).

Lecideopsis circinata (Th. Fr.) Almquist. Mon. Arth. 56,

Auf dem Thallus.

Apothecien oberflächlich, auf dunkeln Flecken sitzend. Schläuche

8sporig. Sporen einzellig, länglich, 13—15:5—6,

Gyrophora vellea (L..).

Lecideopsis circinata (Th. Fr.) Almgq. s. oben.

Haematomma elatinum (Ach.).

Pseudotryblidium Neesii (Fw.) Schröt. II, 148. Auf dem

Thallus. |

Schwarze Apothecien, erst eingesenkt, dann hervorbrechend.

Scheibe graubraun. Schläuche ellipsoidisch-keulig, 8sporig. Sporen ei-

oder spindelförmig, 2—4zellig, 15—18 :6—8, Paraphysenenden braun,

Haematomma ventosum {L..).

Tichothecium ventosicolum (Mudd.) W. 349, Auf dem

Thallus.

Perithecien schwarz, Schläuche vielsporig. Sporen zweizellig,

braun, 8—9:5.

Hagenia eiliaris s. Anaptychia ciliaris.

Heppia Guepini var. nigrolimbata Nyl.

Endococcus pseudocarpus Nyl. Flora 1873. 204. Auf dem

Thallus.

Perithecien oberwärts braun, unterwärts kaum gefärbt. Sporen 8,

dunkel, zweizellig, 9-18 :5-—7.

Heppia obscurans Nyl.

Endococcus pellax Nyl. Flora 1873. 204. Auf dem Thallus.

Dem vorigen ähnlich, aber Perithecien unterwärts braun. Sporen 8,

dunkel, zweizellig, 9--15:5--6,

Hymenelia caerulea s. Jonaspis c.

Icmadophila aeruginosa (Scop.).

Celidium insitivum (Fw.) Rehm 431. Auf der Kruste.

Apothecien erst eingesenkt, dann sitzend, gehäuselos. Frucht-

scheibe braunschwarz. Schläuche 8sporig. Sporen eiförmig- ellip-

soidisch, vierzellig, braun, 10--12:6—8. Epi- und Hypothecium braun.

Jonaspis caerulen (Mass.).

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Aspicilia alpina,

Isidium corallinum s. Pertusaria corallina.

Sale 30 = SEE er eln ze Bazie Ep nun 3 ar ud nn

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 329

Koerberiella Wimmeriana (Kbr.).

Metasphaeria Körberi (Stein) Schröter II. 355. W. 443.

Perithecien eingesenkt, dann sitzend, kugelig, mit eingedrückter

Mündung. Schläuche 8sporig. Sporen nadelförmig, farblos, 5—9zellig,

24 -30:1—2. Paraphysen.

Lecania fuscella (Schaer.).

Müllerella hospitans Stitzenb. Auf den Apothecien.

Schläuche vielsporig.

Lecanora albella (Pers.).

Arthonia vagans Almg. var. lecanorina Almq. Mon. Arth. 54.

Auf den Apothecien.

Apothecien dunkel, sehr klein, eingesenkt. Schläuche 8sporig.

Sporen zweizellig, 9—14:4-6, obere Zelle fast rund. Hypothecium

im Centrum dunkelbraun.

Calycium hospitans Th. Fr.

Arthonia glaucomaria Nyl. s. Lecanora sordida.

Lecanora albescens s. Placodium a.

Lecanora atra (Huds.).

Microthelia atricola Lindsay Observ. 542.

Tichothecium erraticum Mass. W. 350. Schröter II. 343.

Auf dem Thallus.

Perithecien halb eingesenkt, kugelig. Schläuche vielsporig,.

Sporen breit-ellipsoidisch bis fast kugelig, zweizellig, braun, 3—5: 2,9.

Lecanora atrynea (Ach.).

Nesolechia supersparsa (Nyl.) Rehm 318,

Apothecien erst eingesenkt, dann sitzend, dunkel. Schläuche

8sporig. Sporen rhombisch -ellipsoidisch, zugespitzt, 10—12:5—7.

Paraphysen ein stahlblaues Epithecium bildend. Hypothecium gelblich.

Nesolechia aggregantula (Müller) Rehm 319. Auf dem

Thallus.

Apothecien sitzend, dunkel. Schläuche 4--8sporig. Sporen

länglich, stumpf, 10—12:3--4. Hypothecium braunschwarz. Epi-

thecium ebenso oder braungrün.

Karschia homoclinella Nyl. Flora 1872. 361.

Apothecien dunkel, schliesslich unberandet, ca. 0,3 mm breit.

Schläuche 8sporig. Sporen ellipsoidisch bis länglich, braun, zwei-

zellig, 7—11:3—4. Epithecium gelbbraun. Hypothecium nicht braun.

Schlauchschicht durch Jod bläulich, dann roth.

Lecanora badia (Pers.).

Pharcidia badiae (Arnold) W. 346. Auf dem Thallus.

Perithecien halbkugelig, vorragend, schwarz. Sporen zu 8, zwei-

zellig, farblos, 15—16:4—5. Paraphysen fehlend.

330 W. Zopf.

Sphaerella araneosa Rehm W. 356. Auf den Apothecien.

Mycel aus dicken, braunen Zellen gebildet.

Perithecien eingesenkt, schwarz mit dünner, häutiger Wandung.

Paraphysen und Periphysen fehlend. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, braun, 12,5 — 14,3: 5,4.

Lecanora Bokii Rod.

Phaeospora rimosicola (Leight.) Arnold W. 354. Auf dem

Thallus.

Perithecien halb eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

ellipsoidisch oder ellipsoidisch-länglich, zugespitzt, vierzellig, braun,

13—16 :5—6.

Tichothecium peregrinum (Fw.) W. 353. Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

vierzellig, länglich, braun, 15:5. Paraphysen fehlend.

Lecanora campestris (Schaer.) s. L. subfusca var, camp,

Lecanora cenisia Ach.

Leciographa dubia Rehm 380,

Apothecien mit berandeter Scheibe, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen 2—4zellig, braun, 12—14:5. Epithecium braun, Hypothecium

bräunlich. Schlauchschicht durch Jod blau.

Endococcus atryneae Arnold Flora 1882, 410. Auf den

Apothecien.

Perithecien punktförmig, klein, zerstreut oder auch zusammen-

fliessend, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, oblong,

12—14:4—-4,5. Paraphysen fehlend.

Lecanora complanata s. Aspicilia c.

Lecanora coracodes Nyl. s. Aspicilia complanata.

Lecanora erenulata (Dicks.).

Arthopyrenia Cookei (Linds. Obs. 537) Arn.

Lecanora diffraeto-areolata.

Nesolechia supersparsa (Nyl.) Rehm 318. Apothecien erst

eingesenkt, dann sitzend, dunkel. Schläuche 8sporig. Sporen rhom-

bisch-ellipsoidisch, zugespitzt, 10—-12:5—7. Paraphysen ein stahl-

blaues Epithecium bildend. Hypothecium gelblich.

Lecanora dispersa (Pers.).

Tichothecium pygmaeum (Körb.) W. 349, Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche vielsporig. Sporen

ellipsoidisch, zweizellig, braun, 6—8:3—3,5.

Conida clemens (Tul.) Rehm 421. Auf der Fruchtscheibe.

Apothecien unberandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

farblos, zweizellig, 10 - 15:3—5. Hypothecium gelbbräunlich.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 331

Conida punctella (Nyl.) Rehm 423. Auf dem Thallus.

Apothecien unberandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

schwach braun, 15:6, zweizellig. Hypothecium farblos.

Conida galactinaria (Leight. Brit. 426). Auf der Fruchtscheibe.

Identisch mit C. clemens?

Lecanora elaecista (Ach.).

Sphinctrinatubaeformis Mass. Rehm 391. Auf dem Thallus.

Apothecien kreiselförmig, schwarz. Schläuche cylindrisch, 8 sporig.

Sporen einzellig, braun, 9—18 : 6—7.

Lecanora Flotowiana (Hepp).

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Lecanora dispersa.

Conida clemens (Tul.) Rehm 421. Auf der Fruchtscheibe.

Apothecien unberandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

farblos, zweizellig, 10—15:3—5. Hypothecium gelbbräunlich.

Conida lecanorina (Almq.) Rehm 422. Auf der Frucht-

scheibe.

Apothecien unberandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

schwach gelblich, 9—10:4,5—5. Hypothecium dunkler, als bei

voriger Art.

Lecanora frustulosa (Dicks.).

Metasphaeria Steinii (Körb.) Schröter II. 355. W. 443.

Perithecien kugelig, mit flacher Mündung. Schläuche $8sporig.

Sporen lang-spindelig, 22—40 : 2—3, farblos, 3—-9zellig.

Lecanora galactina s. L. dispersa.

Lecanora gelida s. Placodium gelidum.

Lecanora glaucoma s. L. sordida var. glauc.

Lecanora Hageni 3 umbrina Ach.

Karschia vagans (Müll.) Rehm 352. Auf Thallus und Apo-

thecien.

Apothecien sitzend, mit anfangs berandeter Scheibe, mattschwarz.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, stumpf, braun, 9—10:5--7.

Epithecium schwarzbraun.

Conida clemens Tul. Rehm 421.

Apothecien unberandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

schwach gelblich, 9—10 :4,5—5. Epithecium grünlich oder bräunlich.

Lecanora intricata (Schrad.).

Tichothecium Stigma Körb. s. Rhizocarpon geographicum.

Lecanora intumescens (Rebent.).

Pharcidia epicymatia (Wallr.) W. 342. Auf der Fruchtscheibe.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Paraphysen

fehlend. Sporen 2—4zellig, farblos, 10—12:3.

Lecanora pallesceus (L.) s. Ochrolechia pallescens,

le al 2 an A alte “2. ea Brain ce u

332 W. Zopf.

Lecanora pallida (Schreb.) f. lignicola.

Celidium varians (Dav.) Rehm 428. Auf den Apothecien.

Apothecien erst eingesenkt, dann hervortretend, mit zart beran-

deter schwarzer Fruchtscheibe. Schläuche eiförmig, 8sporig. Sporen

verlängert-eiförmig, vierzellig, farblos, 12—-18 : 5—7.

Lecanora parella s. Ochrolechia pallescens var. pavella,

Lecanora polytropa (Ehrh.).

A. Mit Perithecien:

Didymosphaeria epipolytropa (Mudd) W,432. Auf Thallus

und Apothecien.

Schwarze kugelige Perithecien. Schläuche 4—8sporig. Sporen

oblong oder spindelig, zweizellig, farblos, 15—18:4—5. Paraphysen.

Pharcidia epicymatia (Wallr.) s. Lecanora subfusca.,

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349, Auf dem Thallus.

Schwarze kugelige Apothecien. Schläuche vielsporig. Sporen

zweizellig, braun, 6—-9:3—4. Paraphysen fehlen,

B. Mit Apothecien:

Conida clemens (Tul.) Rehm 421. Auf der Fruchtscheibe.

Apothecien unberandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

schwach gelblich, 9—10:4,5—5. Epithecium grünlich oder bräunlich.

Karschia vagans (Müll.) Rehm 352. Auf Thallus und Apo-

thecien,

Apothecien sitzend, mit anfangs berandeter Scheibe, mattschwarz.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, stumpf, braun, 9—10:5-—7.

Epithecium schwarzbraun.

Nesolechia supersparsa Nyl. Rehm 318. Auf Thallus und

Apothecien.

Apothecien erst eingesenkt, dann sitzend, dunkel. Schläuche

8sporig. Sporen rhombisch-ellipsoidisch, zugespitzt, 10—12:5—7,

Paraphysen ein stahlblaues Epithecium bildend. Hypothecium

gelblich.

Nesolechia (?) imponens (Leight. Brit. 385).

Apothecien schwarz, sitzend, mit dünnem Rande. Schläuche

8sporig. Sporen ellipsoidisch, farblos, einzellig, 14—15:5,5. Para-

physen dick, an der Spitze schwarz.

Lecanora rimosa var. grumosa,

Metasphaeria Lichenis sordidi (Mass.) Sacc. II. 184.

Perithecien zusammenwachsend mit dem schwarzen Stroma,

Schläuche 8sporig. Sporen spindelig, gekrümmt, dreizellig, farblos,

12:3. Paraphysen feinfädig.

Lecanora rhypariza Nyl.

Leciographa rhyparizae (Arnold) Rehm 378. Auf der

Fruchtscheibe.

in mie 5. ua > ir nee a re Te Se a ee

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Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 333

Apothecien sitzend, berandet, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen vierzellig, braun, 12—14:6—8. Hypo- und Epithecium braun.

Lecanora salicina s. Callopisma s.

Lecanora sordida (Pers.).

Sclerococcum sphaerale (Ach.) Sacc. IV. 754. Rehm 400.

Auf dem Thallus.

Lager von mauerförmigen braunen Conidien.

Lecidea (Nesolechia?) intumescens Flke Rehm 321.

Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz. Schläuche $sporig. Sporen ellipsoidisch,

einzellig, farblos, 10 — 13:5—6. Epithecium dunkelbraun. Hypo-

thecium braunschwarz.

Celidium varians (Dav.) Rehm 428. Auf dem Thallus und

der Fruchtscheibe.

Apothecien erst eingesenkt, dann hervortretend, mit zart beran-

deter schwarzer Fruchtscheibe. Schläuche eiförmig, 8sporig. Sporen

verlängert-eiförmig, vierzellig, farblos, 12—18:5—7. Epithecium

braun bis braungrün. Hypothecium gelblich.

Leciographa maculans (Arnold) Rehm Ill. 375.

Apothecien zu rundlichen Flecken zusammengedrängt, schwarz,

berandet. Schläuche 8sporig. Sporen verlängert keulig, vierzellig,

21—27:7—8, braun. Epi- und Hypothecium braun.

Celidiopsis furfuracea Anzi Cat. 116. Diagnose bei Leci-

dea rhaetica.

Conida sordida Mass. ist nach Almqu. Mon. Arth. 61 wahr-

scheinlich gleich Conida intexta Almqu. vergl. Lecidea elaeochroma

> pilularis.

Arthonia glaucomaria Nyl. Almqu. Mon. Arth. 59. Auf den

Apothecien.

Apothecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen vierzellig,

15—18:6—-8. Hypothecium farblos. Epithecium dunkel.

Lecanora subfusea (L.).

A. Mit Perithecien:

Pharcidia epicymatia (Wallr.) W. 342. Auf den Apothecien.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Paraphysen

fehlend. Sporen 2- 4zellig, farblos, 10—12:3.

Pharcidia dispersa (Lahm) W. 346. Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche cylindrisch, 8sporig.

Sporen zweizellig, mit grösserer oberer Zelle, farblos, 13—15:4—3.

Paraphysen fehlend.

Epicymatia thallina (Cooke) Sacc. I. 572. Auf dem Thallus.

Perithecien schwarz, kugelig. Sporen zweizellig, farblos, 15:5,

zu 8 im Schlauche. Paraphysen fehlend. Mit voriger identisch?

334 W. Zopf.

Didymosphaeria sphinctrinoides (Zwackh.) W. 432.

Perithecien kugelig bis ellipsoidisch, schwarz. Schläuche cylin-

drisch, 6—-8sporig. Sporen zweizellig, farblos, 18—22:6-—7. Para-

physen feinfädig.

Müllerella hospitans Stitzenb.

Schläuche vielsporig.

Physalospora Lecanorae (Stein) W. 415. Auf Thallus und

Fruchtscheibe.

Perithecien oberflächlich. Schläuche 4—8sporig. Paraphysen

vorhanden. Sporen eiförmig, einzellig, hyalin, 16—20:6— 8.

B. Mit Apothecien:

Celidium varians (Dav.) Rehm 428. Auf Thallus und Frucht-

scheibe.

Apothecien erst eingesenkt, dann hervortretend, mit zart beran-

deter schwarzer Fruchtscheibe. Schläuche eiförmig, 8sporig. Sporen

verlängert-eiförmig, vierzellig, farblos, 12— 18:5 —7.

Celidium insitivum (Fw.) Rehm 431. Schröter II. 136. Auf

der Kruste.

Wie vorige Art, aber Sporen braun, 10—12:6—8,

Pyrenopeziza thallicola (Karsten) Rehm 635. Auf dem

Thallus.

Apothecien gelbbraun bis braun, mit grauweisser Fruchtscheibe,

Schläuche 8sporig. Sporen einzellig, ellipsoidisch, farblos, 7—9:3—3,5.

Paraphysen farblos.

C. Conidienfructificationen:

Torula lichenicola Lindsay Obs. 530. Auf Thallus und

Apothecien.

Conidien 1-—2zellig, olivenbräunlich.

Lecanora subfusca var. bryontha.

Didymosphaeria bryontha (Arnold) W. 430. Auf der

Fruchtscheibe.

Perithecien schwarz, halbkugelig vorragend. Schläuche $sporig.

Paraphysen haarförmig. Sporen zweizellig (selten dreizellig), bräun-

lich, 12— 16 :4—5.

Lecanora subfusea var. campestris Schaer. Auf dem Thallus.

Mycobilimbia subfuscae (Arnold) Rehm 329,

Apothecien schwarz, berandet. Schläuche 8sporig. Sporen läng-

lich-ellipsoidisch, vierzellig, farblos, 12— 16: 3,5 —4.

Lecidea campestricola Nyl. Flora 1884, 389. Auf dem

Thallus.

Apothecien aussen und innen schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen farblos, einzellig, 9—-11:4—-6. Schlauchschicht schmutzig

violett. Epithecium dunkelviolett. Hypothecium wenig dunkel.

Uebersicht der auf Elechten schmarotzenden Pilze. 335

Lecanora subfusca var. Parisiensis.

Dactylospora Lamyi (Rich.) Nyl. Flora 1875, 446.

Apothecien schwarz, gerandet, plan. Schläuche 8sporig. Sporen

vierzellig, 15—23 :6—7.

Lecanora sulphurea (Hoffm.).

Lecidea (Nesolechia?) intumescens Flke. Rehm 321. Auf

dem Thallus.

Apothecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen ellipsoidisch,

einzellig, farblos, 10—13:5—6. Epithecium dunkelbraun. Hypo-

thecium braunschwarz.

Lecanora symmictera Nyl.

Nesolechiaoxyspora(Tul.) Arnold Flora 1888, 111. Rehm 315.

Auf dem Thallus.

Weicht von der echten N. oxysp. ab durch die Maasse der

Sporen, 10—12:4—5.

Lecanora tartarea s. Ochrolechia t.

Lecanora thiodes Spr. s. L. frustulosa.

Lecanora varia (Ehrh.).

Torula lichenicola Lindsay Obs. 530.

Conida caerulescens (Almqu. Mon. Arth. 59). Auf den

Apothecien.

Apothecien fleckenförmig, eingesenkt. Epithecium dunkelblau.

«Schläuche 8sporig. Sporen eiförmig-länglich, mit unterer kürzerer

Zelle, 10—12:4—6. Jod bläut das Hymenium. Spermogonien.

Leeidea albocoerulescens (Wulf.).

Patinella xenophana (Körb.) Rehm 315. Schröter II. 133.

Auf dem Thallus.

Apothecien elliptisch bis strichförmig, mit rillenförmiger Scheibe.

Schläuche 8sporig. Sporen elliptisch, einzellig, farblos, 12—16 :5—7.

Lecidea ceonfluens Fr.

Tichothecium calcaricolum Mudd. W.350. Aufdem Thallus.

Schläuche 8sporig. Sporen braun, zweizellig, 15 —20:6—7.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Schläuche vielsporig. Sporen braun, zweizellig, 6—-8:3—3,5.

Tichothecium gemmiferum Tayl. Arnold Flora 1888, 112.

Auf dem Thallus.

Perithecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig,

braun, 12—15:5.

Lecidea contigua Fr.

Patinella xenophana (Körb.) Rehm 315. Schröter II. 133.

Auf dem Thallus.

336 W. Zopf,

Apothecien elliptisch bis strichförmig, mit rillenförmiger Scheibe.

Schläuche 8sporig. Sporen ellipsoidisch, einzellig, farblos, 12—16:5—7.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Perithecien kugelig.

Schläuche vielsporig. Sporen zweizellig, braun, 6—8:3—3,5.

Tichothecium gemmiferum Tayl. s. Lecidea crustulata.

Leeidea einereo-atra Ach.

Tichothecium pygmaceum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Apothecien kugelig, eingesenkt, schwarz, Schläuche vielsporig.

Sporen braun, zweizellig, 6—8 :3—3,5.

Leeidea canescens Ach.

Sphaeronema lichenophilum Dur. et Mont. Sacc. III. 197.

Pycniden, eiförmig, mit zugespitzter Mündung. Conidien farb-

mE 0:28.

Leeidea eonfervoides ö polycarpa Hepp. s. Catocarpus polycarpus.

Leeidea erustulata (Ach.).

Pharcidia lichenum Arnold W. 343. Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig, braun. Schläuche 8sporig. Sporen zwei-

zellig, farblos, 12—15:3,5—4. Paraphysen fehlen.

Tichothecium gemmiferum Tayl. W. 350. Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen zwei-

zellig, braun, S—12:3—4. Paraphysen fehlen.

Arthopyrenia Martinatiana Arnold. Flora 1871,147, 1872, 572.

Perithecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen farblos, zwei-

zellig, 12—16:3. Paraphysen haarföriig. . En

Lecidea elaeochroma (Ach.) 5 pilularis Th. Fr.

Conida intexta Almqu. Mon. Arth. var. pauperrima Almqu.

l. c. 62. Auf den Apothecien.

Hymenium nicht scharf ausgeprägt, dem des Wirthes eingewachsen.

Durch Jod nicht roth. Schläuche 8sporig. Sporen dreizellig. Para-

physen fehlend.

Leeidea elaeochroma (Ach.) 5 pilularis Th. Fr. f. atrocyanea.

Conida intexta Almqu. Mon. Arth. 60.

Apothecien dem Hymenium des Wirthes eingewachsen, nicht

scharf ausgeprägt. Paraphysen vorhanden. Schläuche 8sporig.

Sporen 3—4zellig, 13—15:5 6. Schläuche durch Jod roth.

Lecidea fumosa Ach.

Polycoccum Sauteri Körb. W. 431. Auf dem Thallus.

Perithecien dicht gedrängt, kugelig. Schläuche cylindrisch,

8sporig. Sporen zweizellig, braun, mit grösserer oberer Zelle,

16—19:9—10,5. Paraphysen fehlend.

Polycoccum fumosaria (Leight. Brit. 493). Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig. Schläuche Ssporig. Sporen zweizellig, braun,

länglich, 15—16:7.

(it EEE N ZZ ee Pa a a a Zaire En A SE neuen © 50 u ah

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 337

Leeidea fumosa var. grisella Fl. s. L. grisella.

Lecidea fusceoatra (L.) s. L. fumosa.

Leeidea goniophila (Flk.) s. Lecidella g.

Lecidea grisella FIk.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig. Schläuche vielsporig. Sporen zweizellig,

ellipsoidisch, 6—8 :3— 3,5.

Leceidea incongrua Nyl.

Polycoccum Sporastatiae Anzi f. incongruae Arnold. Auf

dem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen zwei-

zellig, spindelig, braun.

Leeidea jurana Schaer.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig. Schläuche vielsporig. Sporen zweizellig,

braun, ellipsoidisch, 6—8 :3—3,5.

Hymenobia insidiosa Nyl. Flora 1874. Hue Add. 327.

Perithecien farblos. Sporen eiförmig, zweizellig, farblos,

12—15:4—5.

Lecidea lactea Flk.

Nesolechia vitellinaria (Nyl.) Rehm 319.

Apothecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen einzellig, farb-

los, 7—10 : 5—6.

Tichothecium pygmaeum var. grandiusculum Arn.

Perithecien klein, schwarz. Schläuche ca. 24sporig. Sporen

zweizellig, ellipsoidisch, braun, 9:4.

Lecidea lapieida Fr.

Tichothecium gemmiferum Tayl. W. 350. Auf dem

Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen zwei-

zellig, braun, 8—12:3—4. Paraphysen fehlen.

Lecidea latypaea Ach.

Endococcus microsticticus (Leight.) Arn. W. 430. Auf

dem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche cylindrisch, 8sporig.

Sporen zweizellig, dunkel, 14:7. Paraphysen fädig.

Celidium varians (Dav.) Rehm 428. Auf dem Thallus und

der Fruchtscheibe.

Apothecien eingesenkt, dann hervortretend, mit zart berandeter

schwarzer Scheibe. Schläuche eiförmig, 8sporig. Sporen verlängert

eiförmig, vierzellig, farblos, 12—18 :5—7.

Lecidea nivalis Anzi s. L. rhaetica.

Hedwigia Ba. XXAXV. 18090. 22

a Le Duden

ann. nn Ba Sailinen r e ar e

338 W. Zopf.

Lecidea obseurissima Nyl.

Endococcus complanatae Arnold. W.352. Aufdem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen spindelig,

zweizellig, braun, 15—17:4-5. Paraphysen fehlen.

? Leeidea pannaeola.

Lecideopsisamylospora Almq. Mon, Arth. 48. Auf der Kruste,

Apothecien rund oder eckig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

eiförmig oder länglich, farblos, zweizellig, 18-24 :8—10. Epithecium

braunschwarz.

Lecideopsis (?) intrusa (Th. Fr. Scand. 579).

Apothecien schwarz, convex, unberandet. Hypothecium farblos.

Epithecium grünbraun. Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig,

11—16:4—5.

Leeidea phylliseocarpa Nyl.

Hymenobia insidiosa Nyl. Flora 1874, 314. Hue Add. 327.

Auf dem Hymenium.

Perithecien farblos. Sporen eiförmig, zweizellig, farblos, 12-15 : 4-5.

Leeidea platycarpa Ach.

Phaeospora supersparsa Arnold.

Perithecien punktförmig, den Thallus-Areolen eingesenkt,; Para-

physen fehlend. Schläuche cylindrisch, 4— 6sporig. Sporen meist

vierzellig (2—8zellig), dunkelbraun, 16—21 :7—12,5.

Leciographa Stigma Rehm 377. Auf dem Thallus.

Apothecien gesellig, schwarz. Fruchtscheibe zart berandet.

Schläuche 8sporig. Sporen vierzellig, 6—10:3—4. Epi- und Hypo-

thecium braun.

Tichothecium gemmiferum Tayl. Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen zwei-

zellig, braun, 8—-12:3—4. Paraphysen fehlen.

Lecidea rhaetica (Hepp).

Celidium furfuraceum Anzi Cat. 116.

Apothecien punktförmig, schwarz, anfangs gerandet, plan, später

ungerandet, convex, kleiig-pulverig. Schläuche 8sporig. Sporen

oblong, vierzellig, 11—13 : 5,6—7,5, braun.

Tichothecium pygmaeum, Körb. s. Lecidea grisella.

Leeidea scotinodes Nyl.

Phaeospora triphractoides (Nyl.) Leight. Brit. 497.

Perithecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich-spindelig,

vierzellig, bräunlich, 14—18: 6—7.

Leeidea speirea Ach.

Phaeospora rimosicola (Leight.). Auf dem Thallus. "

Perithecien eingesenkt, mit flachem Scheitel. Schläuche 8sporig.

Sporen spindelig, vierzellig, braun, 13—-16:5—6. Paraphysen fehlend.

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Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 339

Lecidea tenebrosa Fw.

Tichothecium perpusillum (Nyl.). W. 352.

Perithecien eingesenkt, kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen oblong, braun, zweizellig, 14-20 :6-—7.

Leeidea umbonatula Nyl.

Phaeospora triphracta (Nyl.). Flora 1872, 364. Hue Add. 314.

l’erithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

11—16: 4—6,

Lecidea vorticosa (FIk.).

Conida(?)oxyspora (Almg.) Mon. Arth. 62. Aufden Apothecien.

Schläuche 8sporig, durch Jod blau. Sporen schmal, zweizellig,

10—14:3,5—4. Untere Zelle spitz und kürzer.

Leeidella eyanea (Ach.).

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349, Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche vielsporig. Sporen

zweizellig, ellipsoidisch, braun, 6-8:3—3,5.

Lecidella goniophila (Flk.).

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Diagnose vorstehend.

Leeidella immersa Th. Fr.

Didymosphaeria sphinctrinoides (Zwackh) W. 432. var.

immersae Arnold.

Perithecien eingesenkt, kugelig, schwarz. Schläuche cylindrisch,

Ssporig. Sporen zweizellig, farblos, 18:6. Paraphysen haarförmig.

Leeidella plana Lahm.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

Diagnose bei Lecidella cyanea.

Lecidella sabuletorum var. pilularis (Dav.) u. var. coniops (Ach.).

Celidium varians (Dav.) Rehm 428. Auf dem Thallus und

der Fruchtscheibe.

Apothecien eingesenkt, dann hervortretend, mit zart berandeter

schwarzer Scheibe. Schläuche eiförmig, 8sporig. Sporen verlängert

eiförmig, vierzellig, farblos, 12—18 : 5—7.

Lenormandia viridis (Ach.).

Sphaeria Borreri Tul. Mem. 128. Körber Syst. 101.

Leptogium cornieulatum (Hoffm.).

Obryzum corniculatum (Wallr.) Nyl. Syn. 136. Auf dem

Thallus.

Perithecien eingesenkt. Schläuche 8sporig. Paraphysen fehlend.

Sporen farblos, kurz, spindelig, an den Enden zugespitzt, undeutlich,

achtzellig.

dünn a A IE ne

340 W. Zopf.

2 . ® »

3 Leptogium mieroscopieum.

| OÖbryzum corniculatum (Wallr.) s. oben.

i Lithoicea elaeomelaena Mass. s. L. hydrela.

4 Lithoicea hydrela (Ach.).

Pr Endococcus hygrophilus Arn. f. minor. Bagl. et Car. Anacr

| 1881, 355.

Lithoicea margacea (Whlbg.) Arnold.

ö Arthopyrenia Verrucariarum Arnold. Tirol XXV.

E Perithecien winzig, schwarz. Schläuche cylindrisch, 8sporig.

i Sporen farblos, länglich, zweizellig, 21—23:3—4. Paraphysen un- |

: deutlich (fehlend?).

Lithoicea nigrescens (Pers.).

Tichothecium gemmiferum Tayl. s. Lecidcea platycarpa.

1 Lopadium museieolum (Smilt.).

5 Celidium Lopadii Anzi Anal, 24,

3 Lopadium pezizoideum (Ach.).

2 Leciographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 377, var. subsociella

2 Wain. Adj. II. 121.

2 Apothecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen vierzellig (auch

i 5—7zellig), länglich-spindelig, 14—21:5—6. Epi- u. Hypothecium

; schwach bräunlich.

Endococcus heterophractus Nyl. Fl. 1867, 373, Hue Add. 315.

4 Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

ellipsoidisch, vierzellig, dunkel, 10-14 :6-—-7.

Massalongia carnosa var. lepidota Smilt.

Karschia protothallina (Anzi) Cat. 116.

E Apothecien sehr klein, sitzend, plan, schwarz, dünn berandet.

Schlauchschicht durch Jod blau. Hypothecium braun. Schläuche

6— 8sporig, eiförmig, zweizellig, braun, 9,5:5,6. Pyceniden mit ei-

förmigen, farblosen Conidien, 4,6:2.

a a ek ;

; Mieroglaena sphinetrinoides (Nyl.).

t Leciographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 376. Auf dem Thallus.

® Apothecien eingesenkt, dann hervorbrechend, mit dick berandeter

4 Scheibe, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich, 4—-6- (auch

’ 7—8-)zellig, braun, 15—23:5—6. Epi- und Hypothecium braun.

; Mosigia gibbosa Ach. s. Lecanora Bokii.

Nephroma laevigatum Ach.

Celidium Stictarum (De Not.) Rehm 426.

Apothecien eingesenkt, dann hervorbrechend, mit unberandeter

Fruchtscheibe, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich -keulig

oder ellipsoidisch, vierzellig, farblos, 18—25:8—-9. Epi- und Hypo-

thecium grün.

et Bi a A ara Bin An) A eilie ün d a F en ei. is An. a ei

x { E x

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 341

Leciographa Nephromatis Stein. Rehm 380,

Apothecien eingesenkt, dann hervorbrechend, mit runder, dann

leierförmiger, unberandeter Fruchtscheibe, schwarz. Schläuche keulig,

8sporig. Sporen ellipsoidisch, vierzellig, bräunlich, 16—17:4,8—5.

Epithecium braunschwarz. Hypothecium bräunlich-gelb.

Nephroma resupinatum (L..).

Rosellinia Nephromatis (Crouan) Sacc. I. 275.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche keulig, 4sporig. Sporen

eiförmig, gelb, einzellig.

Normandina Jungermanniae s. Lenormandia viridis.

Ochrolechia leprothelia (Nyl.).

.Leciographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 377. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, dann hervorbrechend, mit dick berandeter

Scheibe, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich, 4— 8zellig,

braun, 15—23:5—6. Epi- und Hypothecium braun.

Ochrolechia pallescens (L.) Körb. var. parella (L.).

Coniothecium lichenicolum Linds. Obs. 518. Mit braunen

Conidien.

Sphaerella araneosa Rehm. W. 356. vide Lecanora badia.

Dactylospora parasitica Flk. Nyl. Hue Add. 241.

Apothecien schwarz, Schläuche 8sporig. Sporen vierzellig, braun,

9—-15:3,5—4,5. Jod färbt das Hymenium stark blau.

Mycobilimbia (?) parellaria (Nyl. Flora 1876, 239).

Apothecien schwarz, convex. Sporen meist zwei-, selten vier-

zellig. Paraphysenenden schwarz, keulig.

_ Leciographa inspersa (Tul.) Rehm 374. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, dann sitzend, schwarz mit dick berandeter

Scheibe. Schläuche 8sporig. Sporen braun, 2—4zellig, 9—10:3—3,5.

Ochrolechia pallescens var. upsaliensis s. Ochrolechia Upsa-

liensis.

Ochrolechia parella s. ©. pallescens var. p.

Ochrolechia tartarea (L.).

Leciographa associata (Th. Fr. Spitsberg. 42). Auf dem

Thallus.

Apothecien schwarz. Hypothecium farblos. Schläuche 8sporig.

Sporen einzellig, farblos, ellipsoidisch, 7—9 :6—7.

Orbicula tartaricola (Nyl.) Sacc. I. 383. Auf dem Thallus.

Perithecien ohne Mündung, mit Paraphysen. Schläuche 8sporig.

Sporen kugelig, einzellig, braun, 12—13:9—10.

Leptosphaeria (?) tartarina (Nyl. Flora 1874, 14. 318). Auf

dem Thallus.

Perithecien schwarz, Sporen spindelig, vierzellig, 14—18: 4,5.

De zasaigr: Dakien lan ee 3: 2 ige Bed - nn a a a Kenne >>

Kar ; Es 2 Erg Be aha a re na

349 W. Zopf.

Ochrolechia Turneri (E. B.).

Leciographa inspersa (Tul.) Rehm 374. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, dann sitzend, schwarz mit dick berandeter

Scheibe. Schläuche 8sporig. Sporen 2—4zellig, braun, 9—10 :3—3,5.

Ochrolechia upsaliensis (1..).

Sphaerella araneosa Rehm W. 356. Auf dem Thallus und

den Apothecien.,

Perithecien sehr klein, kugelig, schwarz, einem braunen Mycel

entspringend. Schläuche birnförmig, 8sporig. Sporen zweizellig,

später bräunlich, bisquitförmig, 12—14 : 6—7.

Ochrolechia sp.

Leciographa Weissii Körber Zool. bot. Ges. Wien 1867. 707.

Apothecien vom Thallus gekrönt, schwarz, randlos, bald schüssel-,

bald köpfchen-, bald lirellenförmig. Schläuche 6—8sporig. Sporen

vierzellig, braun, 4—6 mal so lang als breit.

Omphalaria ceribellifera Nyl.

Obryzum latitans Nyl. Flora 1885, 298. Hue Add. 311. Auf

dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, sehr klein, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen farblos, eiförmig, zweizellig, 16—21:6—7. Paraphysen.

Opegrapha atra Pers.

Müllerella Opegraphicola Zopf. sec. Linds. Observ. 549, 555.

Perithecien schwarz. Schläuche birnförmig, vielsporig. Sporen

einzellig, blassbraun. Keine Paraphysen.

Opegrapha gyrocarpa (Fw.).

Calycium subparoicum Nyl. Rehm 404. Auf sterilem Thallus.

Apothecien kreiselförmig sitzend. Sporen verlängert zweizellig,

bräunlich, 8—-9:3.

Calycium parietinum Ach. Rehm 406. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, langgestielt. Sporen fast stets einzellig,

farblos, dann braun, 5—10:3,

Opegrapha zonata Körb.

Tichothecium Stigma Körb. s. Rhizocarpon geographicum.

Pannaria lepidiota (Somflt.).

Metasphaeria Lepidiotae (Anzi) Sacc. II. 184. Auf dem

Thallus.

Perithecien kugelig, schwarz, halb eingesenkt. Schläuche 8sporig.

Sporen spindelig-nadelförmig, sechszellig, 22—26:4. Keine P’araphysen.

Karschia protothallina (Anzi) Rehm 354. Auf dem Proto-

thallus.

Apothecien sitzend, schwarz, mit zart berandeter Fruchtscheibe.

Schläuche 6—8sporig. Sporen eiförmig, zweizellig, dunkelbraun,

9,5:5,5.

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Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 343

Arthonia vagans Almq. Mon. Arth. 53. Auf Thallus und

Apothecien.

Apothecien sehr winzig, eingesenkt oder nur wenig vorragend,

oft zusammenfliessend.- Hypothecium fast farblos. Epithecium dunkel-

braun. Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, 6—12:3—6.

Pannaria plumbea L.ightf.

Leciographaplumbina (Anzi) Nyl. F1.1869, 296. Hue Add. 170.

Apothecien sitzend, schwarz, erst plan und zart berandet, dann

convex, unberandet. Sporen vierzellig, schmal, spindelig, farblos,

17—30:3—4. Schläuche keulig, 8sporig. Hypothecium braun,

’Epithecium grünlich. Schlauchschicht mit Jod blau.

Pannaria porriginosa Wainio.

Leciographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 377. f. homoicoides

Wainio. Adjum. II. 121.

Apothecien berandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen läng-

lich bis spindelig, 6—8 zellig, 12—22:5—6. Hymenium roth oder braun.

Parmelia Borreri (Turn.).

Nesolechia oxyspora (Tul.) Rehm 316. Auf dem Thallus.

Apothecien gesellig, hervorbrechend, schwärzlich. Schläuche keulig,

6—8sporig. Sporen einzellig, elliptisch, zugespitzt, 15—18— 22 :5—7.

Epithecium hellbraun, Hypothecium fast farblos. Jod bläut die

Schlauchschicht.

Parmelia caesia s. Physcia c.

Parmelia caperata (L..).

Abrothallus microsporus Tul. Rehm 361. Auf dem Thallus.

Apothecien schwärzlich, 0,15—0,3 mm breit. Schläuche keulig,

6—-8sporig. Sporen schuhsohlenförmig, zweizellig, sich bräunend,

9,5—11:3,2—4,8. Epi- und Hypothecium braun.

Abrothallus Parmeliarum Smft. Rehm 360. Auf dem Thallus.

Diagnose bei Cetraria glauca.

Nesolechia oxyspora (Tul.) Rehm 316. vergl. Parmelia Borreri.

Nesolechia thallicola Mass. Rehm 317. Auf dem Thallus.

Apothecien schwärzlich, 0,2—0,3mm breit. Schläuchekeulig, 8sporig.

Sporen eiförmig, einzellig, farblos, 6—9:5. Epithecium kastanien-

braun, Hypothecium dunkelbraun. Jod bläut die Schläuche stark.

Parmelia conspersa (Ehrh.).

Abrothallus Parmeliarum (Smflt.) Rehm 360. vergl. Cetraria

glauca.

Nesolechia exyspora (Tul.) Rehm 316. vergl. P. Borreri.

Parmelia demissa Fw.

Pharcidia Ahlesiana (Hepp) W. 348.

Fast unbekannt. Sporen zweizellig, zu 8 im Schlauche, farblos,

mit stumpfen Enden, 9—14:3—4.

344 W. Zopf.

Parmelia encausta (Im.).

Epiphora encaustica Nyl. Flora 1876. 238. Auf den Apo-

thecien.

Apothecien in eine Art Stroma eingesenkt. Schläuche 8sporig.

Sporen spindelig, vierzellig, farblos, 23—28:5. Epithecium schwärzlich,

Hypothecium dünn, bräunlich, Jod färbt die Schlauchschicht roth.

Parmelia obseura s. Physcia o.

Parmelia olivacea (L.).

Karschia Bayrhofferi (Schaer.) Rehm 354. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, 0,3-0,8 mm breit. Schläuche keulig,

8sporig. Sporen länglich, stumpf, zweizellig, braun, 10 -12:5—6.

Epi- und Hypothecium gelbbräunlich. Schlauchschicht durch Jod blau.

Arthopyrenia lichenum f. olivaceae Arn. Ausfl. VII. 302.

Auf dem Thallus.

Perithecien winzig, schwarz. Schläuche 8sporig. Paraphysen

fehlend. Sporen zweizellig, farblos, 15:6 —7.

Parmelia physodes (1.).

Abrothallus Parmeliarum (Smflt.) Rehm 360. vergl. P.

caperata.

Nesolechia oxyspora (Tul.) Rehm 316. vergl. P. Borreri.

Agyrium cephalodioides Nyl. Flora 1866.

Parmelia pulverulenta s. Physcia p.

Parmelia prolixa (Ach.).

AbrothallusParmeliarum (Smflt.)Rehm360. vergl. P. caperata.

Parmelia prolixa (Ach.) var. Delisei.

Abrothallus cladonema (Wedd. Agde. 20). Apothecien dem

Thallus eingesenkt, schwärzlich. Paraphysen an der Spitze braun.

Schläuche 8sporig. Sporen eiförmig, braun, zweizellig, 10—16:5—8.

Parmelia saxatilis (1.).

Abrothallus Parmeliarum (Smflt.)vergl.P.caperata.f,olivascens

Wainio Adj. II. 119.

Nesolechia oxyspora (Tul.) Rehm vergl. P. Borreri.

Celidium tabescens Anzi Rehm 428. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, winzig, schwarz. Schläuche 4—6sporig.

Sporen kahnförmig, 2—3zellig, farblos. Epi- und Hypothecium roth-

bräunlich.

Homostegia Piggotii (Berk & Br.) W. 917. Auf dem Thallus.

Perithecien in 2—3 mm breite, schwarze Stromata eingesenkt,

kugelig, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich, 4zellig,

21—23:7—8.

Leptosphaeria Parmeliarum (Phil. et Plowr.) Sacc. II. 83.

Melanotheca superveniens Nyl. Flora 1866. 358.

. Ball et DE a a na Be DEE a En a a un hin.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 345

Parmelia sinuosa Sm.

Nesolechia oxyspora (Tul.) vergl. P. Borreri.

Parmelia sorediata (Ach.).

Karschia Bayrhofferi (Schaer.) vergl. P. olivacea.,

Parmelia Sprengelii s. P. sorediata.

Parmelia stellaris s. Physcia st.

Parmelia stygia (L.).

Mycoporum epistygium Nyl.

Parmelia tiliacea (Hoffm.).

Abrothallus Parmeliarum (Smiflt.) vergl. P. caperata.

Parmelia sp.

Coniothyrium lichenicolum Karst. Symb. XXI. Auf den

Apothecien kleine schwarze Pycniden. Sporen eiförmig -länglich,

einzellig, braun, 5—7 :3—4.

Peltigera aphthosa (L.).

Leptosphaeria Peltigerarum Arnold. W. 441. Auf dem

Thallus.

Perithecien schwarz, in Häufchen, Schläuche ceylindrisch, 12 —16spo-

rig. Paraphysen haarförmig. Sporen nadelförmig, 90—100:3.

Lecidea insita Stirt. Leight. Br. 545. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, klein, convex, randlos, etwa kugelig, innen

braun. Schläuche 12—16sporig. Sporen farblos, kugelig, einfach.

Paraphysen fadenförmig, mit farblosen oder braunen Enden. Hypo-

thecium rothbraun oder schwarzbraun.

Peltigera canina (1..).

A. Nur in Conidienfructification bekannt:

Fusarium Peltigerae West. Sacc. IV. 708. Rothe Häufchen

spindeliger gekrümmter Conidien. Zu einer Nectria gehörig?

Illosporium carneum Fr. Nach Fuckel Conidienform zu:

Nectria lichenicola. Rothe Häufchen. Conidien eiförmig,

gekrümmt.

Phyllosticta Peltigerae Karsten Sacc. III. 62. Schwarze,

auf hellem Fleck sitzende winzige Pyceniden. Stylosporen länglich,

gerade, 3—6:2.

Staganopsis Peltigerae Karsten. Symb. ad Mycol. Fenn. XXI.

Auf dem Thallus.

Früchtchen gelb. Stylosporen länglich, gekrümmt (2—4zellig ?)

16—22 :4,5—6.

Hendersonia lichenicola Corda. Sacc. III. 440. Schwarze

winzige Pycniden. Stylosporen länglich, spindelig, vierzellig, braun.

Nach Fuckel zu Pleospora Peltigerae.

a 0 2 nn ah a u aan ara ne“

W, Zopf.

B. Ascomyceten mit Perithecien:

a) mit rothen, weichen Perithecien.

Nectria lichenicola (Ces.) W. 122, Sporen 14—16:5--7.

Perithecien kugelig bis kegelförmig. :

Nectria lecanodes Ces. W. 123. Sporen 8&—-11:3—4. Peri-

thecien kugelig, am Scheitel eingedrückt.

Nectria erythrinella (Nyl.) W. 122. Sporen 18—25:6—8.

Perithecien kugelig mit papillenförmiger Mündung.

Nectria Robergei Mont. Sacc. II. 499. Sporen 10—12 lang.

Diese Art wahrscheinlich nicht existenzfähig.

b) mit schwarzen derben Perithecien.

Pleospora Peltigerae Fkl. W. 511. Auf dem Thallus.

Schläuche breit, sitzend, 8sporig. Sporen länglich - eıförmig,

mauerförmig, farblos, 18:7.

Pleospora peltigericola (Nyl.) Flora 1874, 14. Hue Add. 274.

Schläuche 2sporig. Sporen mauerförmig, 40—56 : 14—22, farblos.

Leptosphaeria Caninae (Plowr.) Sacc. II. 81.

Schläuche cylindrisch, 4sporig. Sporen verlängert, vierzellig,

dunkelbraun, 18:5.

Leptosphaeria Rivana (De Not.) Sacc. II. 83.

Schläuche 4sporig. Sporen vierzellig. Endzellen bleich, die

mittleren braun.

Didymosphaeria Peltigerae Fkl. W. 430.

Schläuche cylindrisch, 8sporig, Sporen zweizellig, hellbraun,

12—14:5. Paraphysen fädig.

Epicymatia Mamillula (Anzi) Sacc. I. 571.

Perithecienmündung purpurn, aus dem Thallus hervorragend.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, farblos, 13—15:4—7.

Homostegia lichenum (Smflt.) Fkl. Sacc. II. 649.

Sporen zweizellig, braun, 16:6.

Acanthostigma Peltigerae Fkl. W. 203.

Perithecien schwarz, zarthäutig, um die Mündung braune Haare!

Schläuche 8sporig. Sporen vierzellig, farblos, 19—21 :5—6.

C. Mit Apothecien:

Mycobilimbia obscurata (Smflt.) Rehm 328. Auf dem Thallus.

Apothecien fleischroth bis dunkel-zimmtbraun. Schläuche 8sporig.

Sporen 4— 6zellig, farblos, 15—30:5—8. Epithecium gelbbräunlich.

Hypothecium farblos oder gelbbräunlich.

Mycobilimbia Killiasi (Hepp) Rehm 327. Auf dem Thallus.

Apothecien unberandet, röthlich oder dunkel. Schläuche 8sporig.

Sporen spindelig, 4—8zellig, farblos, 18—40:5—8. Hypothecium

gelblich. Epithecium braun,

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 347

Scutula epigena (Nyl.) Rehm 322.

Apothecien gelblich-röthlich bis braunschwarz. Schläuche 8 sporig.

Sporen eiförmig, zweizellig, farblos, 7—12:4—4,5. Hypothecium

farblos oder schwach gelblich. Epithecium bräunlich.

Scutula aggregata Bagl. et Car. Rehm 327.

Apothecien schwärzlich. Sporen linienförmig-ellipsoidisch, zwei-

zellig, farblos, 9—11:3.

Scutula epiblastematica (Wallr.) Rehm 322.

Apothecien gelblich, dann braun bis schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen farblos, zweizellig, 9-—12:3,5—5. Epithecium bläulich-braun.

Hypothecium gelbbräunlich.

Scutula fuscopurpurea Rehm 325.

Apothecien schwarz oder schwarzbräunlich. Schläuche 6—-8sporig.

Sporen eiförmig bis ellipsoidisch, 10—15 :3--3,5. Epithecium grünlich-

blau. Hypothecium gelbbräunlich.

Scutula affinis (Mass.) Misc. 15.

Phragmonaevia Fuckelii (Rehm 166). Auf dem Thallus.

Fruchtscheibe gelb. Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, farb-

los, 12—14:4—5. Paraphysen farblos.

Phragmonaevia Peltigerae (Nyl.) Rehm 166.

Fruchtscheibe blassbräunlich, trocken schwarz. Schläuche 8 sporig.

Sporen länglich, ei- oder spindelförmig, vierzellig, farblos, 18— 24:68.

Epithecium braungrün.

Coniangium peltigereum Th. Fr. Almqu. Mon. Arth. 49.

Apothecien gross, !a—1?,; mm breit, schwarz. Schläuche 8 sporig.

Sporen zweizellig, 15—21:6,5—8. Hypothecium braun. Epithecium

fehlend. Paraphysenenden nicht verdickt.

Coniangium vagans Almqu. Mon. Arth. p. 50, 54.

Apothecien sehr klein, convex, dunkel. Fpithecium braun.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, 13—18:5—6, länglich, bis-

weilen etwas spitz.

Peltigera horizontalis (L.).

Ophiobolus Peltigerae (Mont.) Sacc. II. 351.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Schläuche keulig, vielsporig.

Sporen nadelförmig, 50:2.

Nectria erythrinella (Nyl.)

Scutula fuscopurpurea (Tul.)

epigena (Nyl.) vergl. Peltigera canina.

= aggregata Bagl. et Car. 327

Phragmonaevia peltigerae (Nyl.)

Peltigera polydactyla Hoffm.

Libertiella malmedyensis Speg. et Roum. Sacc. III. 617.

Auf der Unterseite des Thallus.

„

* R

348 W. Zopf.

Perithecien gehäuft, weich, weiss, um dieMündung braun. Conidien'

einzellig, ellipsoidisch, farblos, 5—6:2—2,5. Auf cylindrischen Basidien.

Conida Pelveti (Hepp.) Rehm 424. Auf dem Thallus.

Apothecien gesellig, dunkle Flecken bildend, schwarz. Schläuche

8sporig. Sporen zweizellig, 10—13:3. Epi- und Hypothecium bräunlich.

Peltigera rufescens (Hoffm.).

Scutula epiblastematica (Wallr.) Rehm 323

Mycobilimbia obscurata Rehm 328 ‚vergl.

Nectria Robergei Desm. Peltigera canina.

Peltigera sp.

Coniangium lapidicicolum Tayl. f. alpinum Arnold. Tirol

XV. 387,

Ophiobolus thallicola (Car. et De Not.), Sacc. II. 351.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

nadelförmig, so lang wie die Schläuche.

Pertusaria amara (Ach.).

Acolium sessile (Pers.) Rehm 398.

Apothecien sitzend, schüsselförmig, an der Basis oft etwas ver-

schmälert, schwarz. Schläuche cylindrisch, 4—8sporig. Sporen läng-

lich, zweizellig, dunkelbraun, 12—-15:6—7.

Pertusaria ceuthocarpa Fr. s. P. coccodes.

Pertusaria coccodes (Ach.).

Acolium sessile (Pers.) Rehm 398.

Apothecien sitzend, schüsselförmig, schwarz. Schläuche cylindrisch,

4—8sporig. Sporen länglich, zweizellig, dunkelbraun, 12—15 :6—7.

Pertusaria ehlorantha Zw. s. P. coronata.

Pertusaria communis DC.

Orbicula Variolariae (Mass.) Sacc. II. Add. p. II. Auf dem

Thallus.

Perithecien kugelig, eingesenkt, schwarz. Schläuche cylindrisch-

länglich, 8sporig. Paraphysen haarförmig, spärlich. Sporen kugelig

oder eiförmig, braun, 6—8:6.

Sphaeria contaminans Nyl. Branth. Lich. Dan. 127.

Dactylospora anomea (Nyl.) Prodr, 153.

Dactylospora homoica (Nyl.) Flora 1866. 373. 419,

Leciographa inspersa (Tul.) Rehm 374. Auf dem Thallus.

Apothecien erst eingesenkt, dann sitzend, dick berandet, schwarz.

Schläuche 8sporig. Sporen länglich-cylindrisch, 2--4zellig, braun,

9—10:3—3,5.

Sphinctrina turbinata (Pers.) Rehm 390. Auf dem Thallus.

Apothecien kreiselförmig, kurz gestielt. Schläuche cylindrisch,

4—8sporig. Sporen kugelig oder viereckig, 5—6 u.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 349

Acolium sessile (Pers.) Rehm 398.

Apothecien sitzend, schüsselförmig, schwarz. Schläuche cylin-

drisch, 4—8sporig. Sporen zweizellig, länglich, braun, 12—15:6—7.

Pertusaria corallina (L.).

Sclerococcum sphaerale (Ach.) Sacc. IV. 754. Rehm 400.

Haufen von mauerförmig getheilten Conidien, braun.

Pertusaria coronata (Ach.).

Sphinctrina turbinata (l’ers.) Rehm 390. Auf dem Thallus.

Apothecien kreiselförmig, kurz gestielt. Schläuche cylindrisch,

4—8sporig. Sporen kugelig oder viereckig, 5—6 4 dick, braun.

Sphinctrina tubaeformis Mass. Rehm 391. Auf dem Thallus.

Sporen spindelig, ellipsoidisch, keulig, braun, 9—18:6—7.

Pertusaria degradata (Müll. Arg.).

Karschia rimulicola (Müll. Arg.) Rehm 352. Auf dem

Protothallus.

Apothecien sitzend, dick berandet, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen zweizellig, braun, 6—10: 3—5.

Pertusaria fallax (Ach.).

Sphinctrina tubaeformis Mass. vergl. P. coronata.

Pertusaria globulifera Turn.

Melaspilea vermifera Leight. Lich. Brit. 437. Auf Thallus

und Früchten.

Apothecien schwarz. Schläuche keulig-eiförmig. Sporen zahl-

reich, farblos, cylindrisch-spindelig, zweizellig, 22:2.

Pertusaria leioplaca Ach.

Sphinctrina turbinata (Pers.) Rehm 390. s. Pert. coronata.,

Sphinctrina tubaeformis Mass. Rehm 391. s. Pert. coronata.

Pertusaria lutesecens (Hoffm.).

Tichothecium Dannenbergii Stein. Arn. Exs. 1514.

Pertusaria ocellata 3 eorallina Ach. s. P. corallina.

Pertusaria pustulata (Ach.).

Sphinctrina tubaeformis Mass. Rehm 391. s. Pert. coronata.

Pertusaria rupestris (DC.).

Sphinctrina turbinata (Pers.) s. Pert. coronata,

Leciographa inspersa (Tul.) s. Pert. communis.

Pertusaria sulphurea Schaer.

Karschia advenula (Leight. Flora Lich. Brit. 388).

Apothecien braunschwarz. Schläuche 8sporig, Sporen zweizellig,

dunkel, länglich. Hypothecium und Epithecium schwarzbraun.

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W. Zopt.

Pertusaria sulphurella Körber var. variolosa.

Rosellinia Groedensis Zopf. Auf dem Thallus.

Perithecien kugelig-ellipsoidisch, meist höckerig, schwarz, ober-

Nächlich oder mit der Basis eingesenkt, 0,3--0,6 mm hoch, meist

gesellig, von dunklem Mycel entspringend. Schläuche cylindrisch,

8sporig, Sporen elliptisch, eiförmig-citronenförmig, von der Seite

etwas zusammengedrückt, dunkel gefärbt, 16—24:10—12,5. Para-

physen schlank, vergallertend, in Periphysen übergehend. An den

oberflächlichen Myceltheilen Gemmenbildung,

Pertusaria Wulfeni (DC.).

Leciographa inspersa (Tul.) Rehm 374. Auf dem Thallus.

Apothecien erst eingesenkt, dann sitzend, schüsselförmig, dick

berandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich-cylindrisch,

2—4zellig, braun, 9—10:3—3,5.

Sphinctrina turbinata (Pers.) Rehm 390. Auf dem Thallus.

Apothecien kreiselförmig, kurz gestielt. Schläuche cylindrisch,

4—-8sporig. Sporen kugelig oder viereckig, 5—6 « dick, braun.

Sphinctrina tubaeformis Rehm 391. Auf dem Thallus.

Sporen spindelig, ellipsoidisch, keulig, braun, 9 - 18:6-—7.

Dactylospora,parasitica (Flk.) s. Ochrolechia pallescens.

Pertusaria sp.

Leciographa Weissii Körb. Auf dem Thallus. Diagnose

bei Ochrolechia sp.

Dactylospora parvula Arnold. Flora 1888, 112. Auf dem

Thallus.

Apothecien ziemlich concav, Epithecium gelbbraun, durch Kali-

lauge blutroth. Schläuche Ssporig. Sporen vierzellig, braun, 15 — 18:4.

Physeia australis s. Gasparrinia a.

Physcia caesia (Hoffm.).

Leciographa convexa (Th. Fr. Arct. 334).

Apothecien anfangs berandet, später randlos, schwarz, convex.

Schläuche 8sporig, bauchig-keulig, Paraphysen locker, an der Spitze

mit brauner, kopfiger Anschwellung. Sporen länglich, bisweilen ge-

krümmt, 4zellig, braun, 16—22:6—7. Hymenium durch Jod blau.

Conida epiphyscia (Nyl.) Flora, 1875. 361.

Apothecien convex, schwarz, bis 0,2 mm breit, Schläuche 8sporig.

Sporen zweizellig, 11—12:4,5. Jod färbt die Schlauchschicht roth.

Mycoporum physciicolum Nyl, Flora 1873. 299. Rehm 224.

Perithecien schwarz, kugelig. Sporen 8, braun, länglich-eiförmig,

zweizellig, 10—13 :4—6.

Physeia callopisma s. Gasparrinia c.

Physeia eiliaris s. Anaptychia c.

Br Zn MT N Sr ie A ti ai na a A a ie

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 351

Physeia obscura (Ehrh.).

Karschia thallophila (Öhlert) Rehm 353. Auf dem Thallus.

Apothecien sitzend, schwärzlich, zuletzt unberandet und gewölbt.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, braun. Epithecium und Hypo-

thecium braun.

Leciographa convexa (Th. Fr.) s. Physcia caesia.

Epicymatia thallina (Cooke) Sacc. I. 572. Auf dem Thallus,

Perithecien halb eingesenkt, schwarzbraun. Paraphysen fehlen.

Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, farblos, 15:5.

Physecia parietina s. Xanthoria p.

Physeia pulverulenta (Schreb.).

Physalospora psoromoides (Borr.) W. 415. Aufdem Thallus.

Perithecien heerdenweis, eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen einzellig, ellipsoidisch-länglich oder eiförmig, farblos, 12—14 :5.

Karschia pulverulenta (Anzi) Rehm 353. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, hervorbrechend, dann sitzend, später mit

unberandeter Fruchtscheibe. Schläuche Ssporig. Sporen zweizellig,

braun, ellipsoidisch, 17—19:7,5—9,5. Hypothecium braun.

Leciographa muscigenae (Anzi) s. Ph. stellaris.

Physeia stellaris (L.).

Sclerococcum sphaerale Ach. Rehm 400. Sacc. IV. 754.

Haufen*von mauerförmigen braunen Conidien.

Conida destruens Rehm 423. Diagnose bei Xanthoria

parietina.

Conida nephromiaria (Nyl.) var. Stereocaulina (Öhlert) s.

Stereocaulon condensatum.

Illosporium roseum (Schreb.). Conidienform zu Nectria

lichenicola (Ces.)?

Leciographa muscigenae (Anzi) Rehm 379.

Apothecien gesellig, schliesslich sitzend, schwarz. Schläuche

Ssporig. Sporen 2—4zellig, länglich, braun, 1—23:7—9, Epi- und

Hypothecium braun. Jod färbt das Hymenium blau.

Physma chalazanum s. Ph. compact.

Physma compactum Körber.

Pleospora Collematum Zukal. Perithecien eingesenkt, fla-

schenförmig, rothbraun. Schläuche keulig, $sporig. Sporen spindelig,

mauerförmig, 13:4. Taraphysen fädig. Pyceniden eingesenkt, mit

spindeligen, 2 « langen Conidien.

Leptorrhaphis leptogiophila Minks W. 443,

Perithecien eingesenkt, farblos, oben bräunlich, Schläuche

cylindrisch, 8sporig. Sporen spindelig (später vierzellig?), farblos,

16—17:3—4. Paraphysen.

352 ” W. Zopf.

Pilophorus fibula Tuck.

Lecidea attendenda Nyl. Flora 1866, 419. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, 0,15—0,30 mm. Schläuche $sporig. Sporen

länglich-ellipsoidisch, 4—6zellig, 10—16:4. Epi- und Hypothecium

braun. Schlauchschicht durch Jod blau.

Placodium albescens (Hoffm.).

Conida clemens (Tul.) Rehm 421. s. Lecanora polytropa.

Pharcidia epicymatia (Wallr.) W. 342. s. Lecanora subfusca.

Placodium braeteatum (Hloffim.).

Pharcidia constrictella (Müll.) s. Plac. fulgens.

Placodium earphineum Nyl.

Endococcus epicarphineus (Nyl. Flora 1872. 431). Auf

4 dem Thallus.

; Perithecien schwarz. Schlauchsporen spindelig, zweizellig,

18—25 : 6—7.

3 Placodium ehrysoleueum (Ach.).

4 Conida clemens (Tul.) Rehm 421. s. Lecanora polvtropa.

R Karschia leptolepis (Bagl.) Rehm 354.

4 Apothecien 0,3—0,4 mm diam. Schläuche 8sporig. Sporen

kugelig-ellipsoidisch, 6—9:4—-6. Epithecium braunschwarz. Hypo-

| thecium fast farblos.

Placodium eireinatum (Pers.) Nyl.

; Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349. Auf dem Thallus.

; Perithecien ellipsoidisch, nicht kugelig, schwarz, sehr dickwandig,

4 138—189 u hoch, 97—120 « br. Schläuche vielsporig. Sporen ellip-

; soidisch, zweizellig, braun, 5,9—6,6 :2,6—3.

Ä Placodium coneolor (Ram.) 3 angustatum (Arn.).

: Karschia epiconcolor Bagl. et Car. Rehm 355.

a Apothecien erst eingesenkt, dann sitzend, schwarz. Schläuche

4 8sporig. Sporen elliptisch oder schuhsohlenförmig, zweizellig, bräunlich,

10-14 : 56,

4 Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349, s. Catocarpus

- alpicolus.

j Placodium erassum (Ach.).

F Epicymatia Psoromatis (Mass.) Sacc. I. 573.

i Perithecien dem Thallus eingesenkt. Schlauchsporen spindelig

oder keulig, schwach gekrümmt, 12—18:6, zweizellig, farblos.

Placodium diffractum (Mass.).

Nesolechia aggregantula (Müll.) Rehm 319, Auf dem Thallus.

Apothecien sitzend, schliesslich unberandet, schwarz. Schläuche

4--8sporig. Sporen einzellig, farblos, 10—12:3—4. Epi- und Hypo-

thecium braunschwarz.

Sr ! a a ” ae ie r ER

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 353

Placodium disperso-areolatum (Schaer.).

Tichothecium pygmaeum Körb. vide Placod. circinatum.

Placodium fulgens.

Pharcidia constrictella Müll. Flora 1874. 350. W. 345.

Perithecien eingesenkt. Schläuche 4sporig. Sporen ellipsoidisch-

länglich, zweizellig, farblos, 18— 22:89,

Tichothecium pygmaeum s. Placodium orbiculare.

Placodium gelidum (L.).

Lecideopsis circinata (Th. Fr.) Almquist Monogr. Arth. 56.

Apothecien eingesenkt, zu kleinen Flecken zusammenfliessend.

Schläuche schmal, 40—50:20—23. Sporen zu 8, 13—17:6--7.

Sorothelia squamarioides (Mudd) Zopf. Auf dem Thallus.

Perithecien gehäuft, punktförmig, schwarz. Schläuche cylindrisch,

8sporig. Sporen spindelig, eiförmig, birnförmig, bohnenförmig oder

stabförmig, zweizellig, braun, 16—21:6--9, mit Paraphysen.

Sphaeria gelidaria Mudd Man. 130.

Placodium orbiculare (Schaer.).

Karschia Sphyridii Stein f. epiconcolor. Bagl. et Car. Rehm

355. vergl. Placod. concolor.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349.

Perithecien kugelig, schwarz. Schläuche vielsporig. Sporen

zweizellig, braun, 6—8:3—3,5.

Placodium saxicolum (Poll.).

Didymosphaeria Ulothii Körber W. 432.

Perithecien eingesenkt, kugelig, schwarz. Schläuche 4—8sporig.

Sporen zweizellig, spindelig, farblos, 16—20:5. Paraphysen.

Conida clemens (Tul.) Rehm 421. vergl. Lecanora polytropa.

Cercidospora pluriseptata (Nyl.) Flora 1873, 74. Auf

Thallus und Apothecien.

Perithecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen sechszellig,

18—30 : 5—6.

Placodium saxicolum (Poll.) f. dealbatum Mass.

Karschia saxatilis (Schaer.) Rehm III. 350.

Apothecien schwarz, mit dick berandeter Fruchtscheibe. Schläuche

8sporig. Sporen länglich oder keulig, zweizellig braun, 10—12:4—5.

Epi- und Hypothecium braun.

Placodium stramineum.

Karschia adjuncta (Th. Fr.) Flora 1866 p. 316.

Apothecien schwarz, 0,3—0,4 mm. Hypothecium schmutzig.

Paraphysen mit dunklem Ende. Schläuche 8sporig, durch Jod blau.

Sporen zweizellig, braun, ellipsoidisch, 13—16 : 7—8.

Platysma glaucum s. Cetraria gl.

Hedwigia Ba, XXXV. 1890. 23

Be. a ie a RR; %; > eur in ie u hu ER ae nu

354 W. Zopf.

Pleopsidium cehlorophanum s. Acarospora chl.

Polychidium museieolum (Körb.).

Scutula (?) leptogica (Nyl. Flora 1875, 13, sub Lecidea).

Apothecien schwarz, ca. 0,3 mm breit, etwas berandet. Schläuche

8sporig. Sporen einzellig, ellipsoidisch, 9—12 :4,5—5,5. Epithecium

braun, Hypothecium farblos.

Polyblastia intercedens (Nyl.).

Endococcus opulentus Th. Fr. et Almq. Bot. Not. 1867, 109,

Polyblastia Sendtneri Kremphb.

Tichothecium calcaricolum Mudd. var. Sendtneri Arnold

W, 351.

Perithecien kugelig, vorragend. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, braun, 15—18:6—8,.

Polyblastia terrestris Th. Fries.

Thelidium superpositum (Nyl.).

Perithecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen eiförmig, zwei-

zellig, 17—19:7—8. Schläuche durch Jod roth,

Porocyphus eataraetarum Körb.

Pharcidia Porocyphi (Stein) W. 347,

Perithecien sitzend, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen zwei-

zellig, eiförmig, 6—8:2—3, farblos.

Porpidia trullisata Krmph.

Tichothecium gemmiferum (Tayl.). Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, sehr klein, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen zweizellig, braun, 8—12:3—4. Paraphysen fehlend.

Psora aenea (Duf.).

Tichothecium calcaricolum (Mudd) W. 350.

Perithecien halb eingesenkt, kugelig. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, braun, 19— 20:6. Paraphysen fehlend.

Psora deeipiens (Ehrh.).

Pharcidia Psorae (Anzi) W. 345. Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt. Schläuche 8sporig. Sporen länglich-

keulig, zweizellig, farblos, 27—30:6—9. Paraphysen fehlend.

Psora lamprophora Köbr.

Tichothecium Stigma Körb, W. 351.

Perithecien punktförmig, eingesenkt. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, braun, 14—20:5-6. Paraphysen fehlend.

Psora lurida (Ach.).

Verrucaria conductrix Norm, Flora 1866, 284. Aufdem Thallus,

Perithecien hervorbrechend, 0,12—0,15 mm, etwa kugelig, schwarz.

Paraphysen fehlen. Schläuche 8sporig. Sporen einzellig, farblos,

Schläuche durch Jod roth,

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 355

Psora rubiformis.

Arthopyrenia conspurcans Th. Fr. Spitsberg 51.

Perithecien punktförmig, sitzend, schwarz. Schläuche 8sporig.

Sporen spindelig, zweizellig, farblos, 12—14:4— 4,5. Paraphysen fehlend.

Psora tabacina s. Thalloedema tabacinum.

Psoroma fulgens s. Placodium f.

Psoroma erassum s. Placodium cr.

Psoroma lentigerum s. Placodium |.

Psorotichia lutophila Arn.

Arthopyrenia lichenum AÄrn. W. 343,

Perithecien mehr oder weniger eingesenkt, kugelig, sehr klein,

braun. Schläuche bauchig, 8sporig. Sporen keulig, zweizellig, farblos,

12—15:3,55—4. Paraphysen fehlend.

Pyrenodesmia Agardhiana (Ach.) s. Callopisma A.

Pyrenodesmia chalybaea s. Callopisma ch.

Pyrenopsis haemalea terricola.

Endococcus coccisporus Norm. Loc. nat. 375.

Ramalina sp.

Leptosphaeria Ramalinae (Desm.) Sacc. II. 84.

Perithecien eingesenkt, punktförmig. Schläuche 8sporig. Sporen

ellipsoidisch, braun, mit 4 Oeltropfen (vierzellig?), ganz ungenügend

bekannt»

kehmia caeruleo-alba,

Phaeospora rimosicola (Leight.) Arn. W. 354. Schröt. II. 346.

Perithecien ganz oder halb eingesenkt, 0,2—0,3 mm. Schläuche

Ssporig. Sporen länglich -ellipsoidisch, meist beidendig spitz, vier-

zellig, bräunlich, 13—16 :5— 6.

Rhexoblephara coronata Th. Fr.

Arthopyrenia rhexoblepharae Wainio Adj. II. 194.

Perithecien sehr klein, schwarz, halb eingesenkt. Paraphysen

fehlend. Schläuche ellipsoidisch, 8sporig. Sporen zweizellig, farb-

los, eiförmig-länglich, 14—16 :4—5.

Rhizocarpon alpicolum s. Catocarpus alpicolus.

Rhizocarpon atroalbum (Wulf.).

Tichothecium gemmiferum Tayl. s. Rhiz. concentricum.

Tichothecium pygmaeum Körb. W. 349, s. Rh. excentricum.

Tichothecium complanatae Arn. s. Rhizoc. concentricum,

Rhizocarpon ealcareum (Weiss).

Phaeospora rimosicola (Leight.) W, 354. Schröter II. 346.

s, Rehmia coerulea.

Rhizocarpon eoncentrieum (Dav.).

Phaeospora rimosicola (Leight.) s. Rehmia coerulea,

23*

356 W. Zopt.

Tichothecium gemmiferum Tayl. W. 350. Auf dem Thallus.

Perithecien sehr klein, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, braun, 8S—12:3—4, keine Paraphysen. |

Tichothecium complanatae (Arn.) W. 352.

Perithecien sehr klein, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

zweizellig, braun, 15—18:4—6. Paraphysen fehlen.

Celidiopsis furfuracea Anzi Cat. 116. Diagnose bei Lecidea

rhaetica.

Rhizocarpon eoniops Wahlb.

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Rhizoc. atroalbum.

Rhizocarpon distinetum s. Rh. alboatrum.

Rhizocarpon excentrieum (Ach.).

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Rhizoc. atroalbum.

Phaeospora rimosicola (Leight.) s. Rhizoc. calcareum.

Pharcidia endococcoidea (Nyl.) Flora 1865, 356.

Perithecien halb eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

länglich - ellipsoid, dreizellig, 16—18:6—7. Paraphysen fehlend.

Schlauchwand durch Jod roth.

Arthopyrenia allogena (Nyl. Flora 1865, 357). Auf dem

Thallus.

Perithecien halb hervorragend, schwarz, der eingesenkte Theil fast

farblos. Schläuche 8sporig. Sporen zweizellig, farblos, 23—27 :8—9.

Rhizocarpon geminatum s. Rh. Montagnei.

Rhizocarpon geographicum (L.).

Tichothecium macrosporum Hepp. W. 352. Auf dem

Thallus.

Perithecien eingesenkt mit flachem Scheitel, schwarz. Schläuche

8sporig, Sporen zweizellig, braun, spindelig, 16—24 :6—8. Schlauch-

wand durch Jod roth.

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Rhizoc. alboatrum.

Tichothecium gemmiferum (Tayl.) s. Rhizoc. concentricum.

Tichothecium Stigma Körb. Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig. Paraphysen

fehlend. Sporen spindelig, zweizellig, braun, 14—20 (selbst 25) :5,5—8.

Schlauchwand durch Jod weder blau noch roth.

Leptosphaeria polaris (Ih. Fr.) Sacc. II. 83. Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Schläuche 4sporig. Sporen

vierzellig, dunkelbraun, 28—-32:9—10. Mit Paraphysen.

Phaeospora geographicola Arnold. Auf dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, mit breitem schwarzen Scheitel. Para-

physen lang und relativ dick. Schläuche 4-, 6- oder 8sporig. Sporen

als vier- oder mehrzellige Gewebekörper oder meistens als vierzellige

Zellreihen ausgebildet, braun, 11—27:7—10.

er iu

grün

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 357

Rhymbocarpus punctiformis Zopf. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, schwarz, sehr klein. Epithecium span-

, Hypothecium farblos. Schläuche 8sporig. Sporen farblos, ein-

zellig, ellipsoid bis oblong oder bohnenförmig 10,7 —12,5:3,6—5,4.

Rhizocarpon grande (Flke.).

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Rhizoc. alboatrum.

Rhizocarpon Montagnei (Fw.).

Tichothecium fusiferum Th. Fr et Almgq. Bot. Not. 1. 1867, 109.

Tichothecium gemmiferum (Tayl.) vergl. Rh. concentricum.

Rhizocarpon obseuratum (Ach.).

Tichothecium pygmaeum Körb. s. Rhizoc. alboatrum.

Rhizocarpon petraeum s. Rh. alboatrum.

Rhizocarpon polycarpon s. Catocarpus 1.

Rhizocarpon subeoncentrieum s. Rh. concentricum.

Ricasolia disseeta.

Arthonia subconveniens Nyl. Flora 1867, 440.

Der ‘Arthonia stictaria (s. Sticta aurata) ähnlich, aber Sporen

15:4.

Rinodina arenaria (Hepp) var. cana Arn.

Tichothecium gemmiferum (Tayl.) s. Aspicilia aquatica.

Rinodina atroeinerea.

Tichothecium gemmiferum (Tayl.).

Rinodina Bischofii (Hepp).

TichotheciumpygmaeumKörb. var. ecatonspora Anzı W. 349.

Perithecien eingesenkt, schwarz, sehr klein. Schläuche vielsporig.

Sporen zweizellig, braun, ellipsoid, 9:3.

Rinodina erustulata,

Tichothecium pygmaeum Kbr. vergl. Rinodina Bischofi.

Rinodina exigua (Ach.)

Cercidospora exiguella (Nyl.) F1.1873, 204. Auf dem Thallus.

Perithecien im oberen Theile blau, im unteren fast farblos.

Schläuche 4sporig. Sporen spindelig, zweizellig, farblos, 21 — 27 :6—8.

Paraphysen. Jod färbt die Schläuche nicht.

Rinodina turfacea (Whlbg.).

Leciographa urceolata (Th. Fr.) Rehm 377. Diagnose bei

Ochrolechia leprothelia.

Spo

Siegertia calearea s. Rhizocarpon calcareum.

Siegertia Weissii s. Rhizocarpon calcareum,

Solorina bispora (Nyl.).

Bertia lichenicola De Notaris s. Solorina crocea.

Karschia epiphorbia Leight. Fl. Br. 388.

Apothecien schwarz, convex, unberandet. Schläuche 8sporig.

ren farblos oder gelblich. Jod färbt die Schlauchschicht weinroth.

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358 W. Zopf.

Solorina erocea (L.).

Pharcidia Schaereri (Mass.) var, croceae Arnold. Auf dem

Thallus.

Perithecien kugelig, eingesenkt, später hervortretend. Schläuche

3sporig. Sporen keulen- oder stäbchenförmig, 2—4zellig, hyalin,

12—14 :2—3,

Xenosphaeria oligospora Wainio Adi. II. 203.

Perithecien halb oder ganz eingesenkt, schwarz, Paraphysen

feinfädig. Schläuche 4sporig. Sporen spindelig-länglich, vierzellig,

dunkelbraun, 22—31:8—10.

Bertia lichenicola De Notaris W. 237. Auf dem Thallus.

Perithecien gehäuft, sitzend, höckerig. Schläuche 2—4sporig,

Sporen zweizellig, farblos, 30-50 : 7—9.,

Xenosphaeria croceae Bagl. et Car. Anacr. 352.

Leptosphaerialichenicola Zopf. Auf Thallus und Apothecien.

Perithecien punktförmig, eingesenkt, mit spangrüner Wandung.

Schläuche cylindrisch, kurz gestielt, 6—8sporig. Sporen spindelig

oder schmal-keulig, farblos, 5—7 zellig, 20—23,7 : 5,3—5,9, Paraphysen

sehr fein, spärlich und sparrig verästelt.

Mycobilimbia Arnoldiana Zopf. Auf dem Thallus.

Apothecien klein, 0,15—0,43 mm breit, schwarz, glänzend, hervor-

brechend, stark gewölbt. Schläuche kurz, keulig, am Scheitel breit

gerundet, 6—-8sporig, durch Jod sich bläuend. Sporen spindelförmig,

schwach bogig gekrümmt, 2—8zellig, farblos. Die Paraphysenenden

spangrün, durch Salpetersäure violett oder violettbraun.

Arthonia vagans Almgq. var. peltigerina Almgq. s. Solorina

saccata.

Thelocarpon epibolum Nyl. Flora 1866, 420. 1869, 84.

Hue Add. 265.

Apothecien gelbgrün. Schläuche vielsporig. Sporen länglich,

einzellig, farblos, 4—6:2—2,5. Paraphysen fein,

Solorina limbata Smilt.

Karschia epiphorbia (Leight. Fl. 388),

Diagnose vorstehend.

Scutula epiblastematica (Wallr.) Rehm 323,

Apothecien sitzend, gelblich, dann braun bis schwarz. Schläuche

8sporig. Sporen zweizellig, farblos, eiförmig oder ellipsoidisch-spindelig,

9—12:3,5-5. Epitheeium bläulich braun. Hypothecium gelbbräunlich.

Scutula solorinaecola (Wainio) Rehm 323.

Apothecien eingesenkt, dann sitzend, anfangs zart berandet,

später unberandet, convex, schwärzlich. Schläuche Ssporig. Sporen

zweizellig, verlängert eiförmig oder ellipsoidisch, 9-—14:3— 3,5.

Epithecium grünlich-braun. Hypothecium schwach gelblich.

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Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 359

Scutula Krempelhuberi Körb. Rehm 323. Ungenügend

bekannt.

Apothecien sitzend, mit zart berandeter, etwas gewölbter Frucht-

scheibe, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen ellipsoidisch, zweizellig,

farblos, 2'/;, mal länger als breit (12—14:4,5). Schlauchschicht und

Gehäuserand kirschbräunlich.

Conida Pelveti (Hepp.) f. Solorinae Rehm 424.

Apothecien gehäuft, schwarze Flecke bildend, unberandet, schwarz.

Schläuche 4—8sporig. Sporen länglich-keulig, farblos, zweizellig,

mit grösserer oberer Zelle, 10—13:4—5. Epi- und Hypothecium

bräunlich.

Arthonia vagans var. peltigerina Almq. Rehm 424. vergl.

Solorina crocea. Mit Conida Pelveti vielleicht identisch.

Arthonia peltigerea Th. Fr. s. Rehm 424.

Apothecien gross, convex, schwarz, 0,5—1,75 diam, Hypothecium

dick, dunkelbraun. Epithecium fehlend. Schläuche 8sporig. Sporen

eiförmig-länglich, 15—21 : 6,9 —8. Jod färbt die Schlauchschicht roth.

Solorina saccata (L.).

Pleospora Engeliana (Saut.) W. 493.

Perithecien gesellig, eingesenkt. Schläuche eylindrisch, 8sporig.

Sporen mauerförmig, gelbbraun 21-—-25:8—9. Identisch mit folgender?

Pleospora Solorinae (Mont.) Sacc. II. 274.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

vielzellig, braun, mauerförmig, 30: 10—15.

Nectria (Pleonectria) lutescens Arn. W. 108.

Perithecien roth. Schläuche 2--4sporig. Sporen länglich, vier-

zellig, feinwarzig, röthlich-bräunlich, 2445 :9—10.

Melanomma Solorinae (Anzi) Sacc. II. 112.

Perithecien gesellig, halbeingesenkt, schwarz. Schläuche 2—6sporig.

Sporen 4—8zellig, dunkel, 23—30::7—12.

Arthonia vagans Almgq. var. peltigerina Almq. Mon. Arth. 54.

Apothecien convex, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen länglich,

bisweilen an beiden Enden spitz. 13—18:5-—6. Epithecium dunkel-

braun.

Arthopyrenia coniodes (Nyl.) Flora 1875 u. Wainio

Adj. II. 194.

Perithecien sehr klein, halbeingesenkt, schwarz. Paraphysen

fehlend. Schläuche bauchig, 8sporig. Sporen eiförmig-länglich, zwei-

zellig, farblos, 11—12 :3—5.

Sporastatia einerea (Schaer.).

Didymosphaeria Sporastatiae (Anzi) W. 431.

Perithecien kugelig, eingesenkt, schwarz. Schläuche 8 sporig.

Sporen zweizellig, braun, 17-23: 7—8.

360 W, Zopf.

Sporastatia Morio s. Sp. testudinea,

Sporastatia testudinea (Ach.).

Didymosphaeria Sporastatiae (Anzi) W. 431 s. Sporast.

cinerea,

Sporodietyon theleodes (Smflt.).

Arthopyrenia superposita (Nyl.) Flora 1865, 358.

Apothecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen eiförmig, zwei-

zellig, 17—19:7—8,.

Sphaeromphale fissa Tayl.

Arthopyrenia rivulorum Kernstock in Arn, Ausfl. XXV. 403.

Diagnose bei Verrucaria pachyderma.

Pharcidia hygrophila (Arn.) W. 348.

Perithecien kugelig, schwarz, sehr klein. Schläuche 8sporig.

Sporen zweizellig, farblos, 15—18:5—6, Keine Paraphysen.

Sphyridium byssoides (L..).

1. Discomyceten.

Nesolechia inquinans (Tul.) Rehm 320. Auf dem Thallus.

Sporen einzellig, farblos, 9,6—12,8 : 4,8—6,5. Paraphysen verklebt.

Hypothecium dunkelbraun.

Celidium ericetorum (Fw.) Rehm 431. Schr. II. 136. Auf

dem Thallus.

Sporen vierzellig, farblos, 10°—15:3. Paraphysen nicht verklebt,

Hypothecium farblos. Epithecium grünlich.

Lahmia Füstingii Körb. Rehm 343. Auf dem Thallus.

Sporen nadelförmig, 8—16zellig, farblos, 20—70 :2—2,5. Gehäuse

schwarzgrün oder blaugrün.

Karschia scabrosa (Ach.) Rehm 350. Auf dem Thallus.

Sporen länglich, zweizellig, braun, 9—12:4—5 (nach Fries

12—18:6-—-8). Epithecium grünlich, Hypothecium gelbbraun.

Karschia allothallina (Nyl.) Rehm 351. Auf dem Thallus.

Sporen länglich, zweizellig, schwärzlich-braun, 8—14:3—5,

Epithecium gelbbraun, mit Aetzkali purpurn. Hypothecium braun.

Karschia particularis (Nyl. Flora 1877, 461). Aufdem Thallus.

Sporen ellipsoidisch, zweizellig, schwarzbraun , 8—10:35—4,5

(mit voriger identisch ?).

Mycobacidia flavovirescens (Dicks.) Rehm 338, Auf dem

Thallus.

Sporen nadelförmig, 6—-16 zellig, farblos, 30—90:3. Epithecium

grünlich-bräunlich., Hypothecium schwach bräunlich. Gehäuse

schmutzig -grünlich.

Karschia Sphyridii Stein Rehm 355.

Sporen bisquitförmig, zweizellig, braun, 9—10,5:4—5. Paraphysen

haarförmig. Epithecium braungrün.

Ber.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze, 361

Karschia glauconigella (Nyl. Scaud. 238).

Thelocarpon epithallinum Leight. Brit. 439.

Apothecien gelbgrün. Sporen zahlreich, 6—7 :2—2,5.

Thelocarpon epiboloides Nyl. Flora 1869, 85; 1885, 45.

Apothecium gelbgrün. Sporen zahlreich, 3—4:1—1,5.

2. Pyrenomyceten.

? Leptosphaeria Sphyridiana (Lahm) W. 442. Perithecien

dem Thallus eingesenkt.

Schläuche cylindrisch. Paraphysen. Sporen zu acht, vierzellig,

braun, stumpf, 24—27 :6—9. (Verrucaria pycnostigma Nyl.

Flora 1869, 297, wohl hiermit identisch.)

? Leptosphaeria neottizans (Leight. Lichenfl. Brit. 497).

Sporen zu vier, vierzellig, braun, 24,5—25:8,5—9. Paraphysen.

Sphyridium fungiforme Schrad. s. Sph. byssoides,

Sphyridium placophyllum (Wahlbg.).

Karschia scabrosa (Ach.) Rehm 350. Auf dem Thallus.

Sporen länglich, zweizellig, braun, 9--12:4—5 (nach Fries

12—18:6—8). Epithecium grünlich. Hypothecium gelbbraun.

Lahmia Füstingii Körb. Rehm 343. Auf dem Thallus.

Sporen nadelförmig, 8S—16zellig, farblos, 20—70:2—2,5. Gehäuse

schwarzgrün oder blaugrün.

Conida placophylla Anzi Anal, 24,

Stereocaulon alpinum (Laur.).

Didymosphaeria Sauteri (Körb.) W. 431. Auf dem Thallus.

Perithecien dichtgedrängt, schwärzliche Flecken bildend, halb

eingesenkt, schwarzbraun. Schläuche 8sporig. Sporen mit zwei un-

gleich grossen Zellen, farblos, einreihig, 16—19:9—10,5.

Scutula Stereocaulorum (Th. Fr.) Rehm 325.

Apothecien zerstreut oder gehäuft, sitzend, mit erst flacher, be-

randeter, dann gewölbter, unberandeter Scheibe, schwärzlich. Schläuche

keulig, 8sporig, durch Jod blau, dann violett. Sporen ellipsoidisch

bis verlängert eiförmig, zweizellig, farblos, 15—18:5—6. Epithecium

braun, Hypothecium gelblich.

Leptosphaeria Stereocaulorum Arnold W. 440. Auf dem

Thallus.

Perithecien hervorbrechend, schwarz. Schläuche 4—-8sporig.

Paraphysen fehlend. Sporen länglich-spindelig, vierzellig, farblos,

21—30:5—6.

Xenosphaeria apocalypta Rehm W. 442. Auf dem Thallus.

Perithecien oberflächlich, im Alter runzelig-rissig. Schläuche

4—8sporig. Sporen länglich, ellipsoidisch, gekrümmt, 4—8zellig,

braun, 24—31 :9—10,5.

362 W. Zopf.

Stereocaulon condensatum Hoffm.

Didymosphaeria Sauteri (Körb.) s. Stereoc. alpinum.

Conida nephromiaria (Nyl.) var. Stereocaulina Ohlert

Rehm 425.

Apothecien gehäuft, unberandet, gewölbt, schwarz. Schläuche

breit-birnförmig, 8sporig. Sporen zweizellig, farblos, 10—15 :3—5,

untere Zelle schmäler.

Stereocaulon eoralloides (Fr.).

Scutula Stereocaulorum (Th. Fr.). Diagnose bei Stereoc.

alpinum.

Stereocaulon fastigiatum (Anzi).

Scutula Stereocaulorum (Th. Fr.). Diagnose bei Stereoc.

alpinum,

Stereocaulon paschale (T..).

Tichothecium Stereocaulicolum Lindsay Obs. 537.

Stereocaulon tomentosum (Fr.).

Tichothecium nantllum (Öhlert) W. 352.

Perithecien kugelig, schwarzbraun. Schläuche vielsporig. Sporen

länglich, spitzendig, braun, zweizellig.

Stieta aurata (Ach.).

Arthonia stictaria Nyl. Auf dem Thallus.

Apothecien dunkelbraun, convex. Schläuche 8sporig. Sporen

länglich, zweizellig, farblos, 7--10:3,5—4,5. Hypothecium farblos.

Schlauchschicht durch Jod roth.

Conida Pelveti Hepp. Rehm 424. Auf dem Thallus.

Apothecien gesellig, schwarze Flecke bildend, unberandet,

schwarz. Schläuche 4—8sporig. Sporen länglich-keulig, zweizellig,

mit grösserer oberer Zelle, farblos, 10—13:3. Epi- und Hypothecium

bräunlich.

Stieta pulmonacea (Ach.).

Abrothallus Parmeliarum (Smiflt.)Rehm 360. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, dann hervorbrechend, anfangs schwach

berandet, später unberandet und convex, dunkel, grau oder gelb-

grünlich bereift. Schläuche 6—8sporig. Sporen keulig, zweizellig,

dunkelbraun, 10—17:4—5. Epithecium und Hypothecium braun

bis braungrün.

Abrothallus viduus Körb. Rehm 361. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, dann sitzend, unberandet, schwarz, un-

bereift. Schläuche 8sporig. Sporen verlängert eiförmig, zweizellig,

braun, 10—14:5—6. Hypothecium rothbraun. Epithecium hellbraun.

Hymenium durch Jod blau.

Celidium Stictarum (De Not.) Rehm 426. Auf der Frucht-

scheibe, seltener dem Thallus.

El u a ie de un u 2 ns Re De ah ua nen ll ee Arie

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 363

Apothecien eingesenkt, dann vorbrechend, schwarz, unberandet.

Schläuche 4—8sporig. Sporen ellipsoidisch oder keulig, vierzellig,

farblos, 18-—25:8—9. Epi- und Hypothecium grün.

Abrothallus lobariellum (Nyl.) Flora 1869, 296. Auf dem

Thallus.

Apothecien unberandet, schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen

eiförmig-länglich, zweizellig, braun, 12—16:5—7. Hymenium durch

Jod blau. Epi- und Hypothecium rothbraun. — Mit Abrothallus

viduus Körb. identisch?

Stieta serobieulata (Scop.).

Celidium Stictarum (De Not.) Rehm 426 s. Sticta pulmonacea.

Stigmatomma ceataleptum (Ach.).

Leciographa pulvinata Rehm 427. f. Stigmatommatis Bagl.

et Car. Anacr. 315.

Thalloedema eoeruleo-nigrieans (Lightf.).

Arthopyrenia glebarum Arnold Flora 1887, 152. Exs. 1196.

Auf dem Thallus.

Perithecien winzig, schwarz, mit brauner Wandung. Schläuche

8sporig, 30 —33:12—15, bauchig. Sporen länglich, zweizellig, farblos,

12—15:3. Paraphysen fehlend.

Thalloedema conglomeratum (Mass.).

Nesolechia Bruniana Müll. Arg. Rehm 320.

Apothecien schwarz. Schläuche eiförmig, 6—8sporig. Sporen

ellipsoidisch, einzellig, farblos, 10—12:6—8. Paraphysen ein blaues

Epithecium bildend.

Thalloedema tabarinum Ram.

Pharcidia tabacina Arnold. W. 345. Auf dem Thallus.

Perithecien halb eingesenkt, schwarz, punktförmig. Schläuche

Ssporig, Sporen 2-4zellig, farblos, 10—12:3. Paraphysen fehlend.

Thalloedema vesieulare s. Th. caeruleo -nigricans.

Thamnolia vermieularis (Ach.).

Nesolechia vermicularis Arnold, Rehm 317.

Apothecien in den Thallus eingesenkt. Schläuche cylindrisch-

keulig, 8sporig. Sporen ellipsoidisch oder eiförmig-verlängert, ein-

zellig, farblos, 5—11:3—5. Ohne Epithecium,

Epicymatia frigida Sacc. I, 572.

Perithecien schwarzen torulösen Hyphen aufsitzend, ohne Para-

physen. Schläushe bauchig 8sporig. Sporen eiförmig oder länglich,

zweizellig, farblos, 15 — 18:5 —7.

Sphaeria Crombiei (Mudd) Brit. Clad. 36. Linds. Enum. 29,

364 W. Zopf.

Thelidium diaboli (Körber).

Pharcidia parvipunctata (Stein) W. 347.

Perithecien sehr klein, schwarz, Schläuche 8sporig. Sporen

spindelig, zugespitzt, 2—4zellig, farblos, 12—18:4—5.

Thelidium epipolaeum Arn. s. Th. incavatum.

Thelidium galbanum (Krmphb.).

Tichothecium Stigma Körb,. s. Rhizocarpon geographicum,

Thelidium incavatum (Nyl.).

Xenosphaeria Thelidii Hazsl. Kremplh. Gesch. d. Lichenol.

III. 229. Ohne Diagnose.

Theloschistes flavicans s. Tornabenia fl.

Thelotrema lepadinum (Ach.).

Nesolechia Nitschkii Körb. Par. 462.

Apothecien sehr klein, aus dem Thallus hervorbrechend, unregel-

mässig fleckenförmig, schwarz. Schläuche schmal, keulig, 4—8sporig.

Sporen klein, länglich, stäbchenförmig, einzellig, farblos, 4—6mal so

lang als breit.

Tornabenia flavicans (Sw.).

Didymosphaeria infestans Speg. Sacc. I. 708.

Perithecien gehäuft, schwarz, Schläuche cylindrisch, 8sporig.

Sporen zweizellig, elliptisch-keulig oder eiförmig, untere Zelle kleiner,

12—14:5-6, braun. Paraphysen fehlend.

Umbilicaria pustulata (1..).

Phaeospora Umbilicariae (Linds.) Obs. 538.

Urceolaria seruposa (1..).

Tichothecium Arnoldi (Hepp) W. 351. Auf dem Thallus.

Perithecien sehr klein, kugelig, grünbraun, eingesenkt. Schläuche

6—8sporig. Sporen zweizellig, die obere Zelle grösser, 8—11:3—4.

Karschia talcophila (Ach.) Rehm 356. Auf dem Thallus.

Apothecien eingesenkt, dann hervorbrechend, schwarz. Schläuche

keulig, 8sporig. Sporen zweizellig, braun, 15—17:6-—7.

Karschia Urceolariae (Nyl.)Rehm 356. Dürftevon N. talcoph.

kaum zu trennen sein.

Sphinctrina turbinata (Pers.) Rehm 390. Auf dem Thallus.

Apothecien von Anfang sitzend, schwarz, kreiselförmig, kurz ge-

stielt. Schläuche cylindrisch, 4—8sporig. Sporen kugelig oder vier-

eckig, braun, 5—6 breit.

Usnea barbata (L.) var. florida (L.).

Epicoccum Usneae Anzi Anal, 25 (ein Conidienpilz). Sacc.

IV. 741.

Abrothallus Parmeliarum (Smiflt.) Rehm 360. Auf dem Thallus.

Apothecien schwarz, mit grau- oder gelbgrünlichem Reif. Schläuche

keulig, 6—8sporig. Sporen keulig, zweizellig, dunkelbraun, 10—17:4—5.

Uebersicht der auf Flechten schmarotzenden Pilze. 365

f. chrysanthus Stein, Rehm 361.

Apothecien am Rande grüngolden bereift. Schläuche sehr schmal,

keulig, Sporen 8—10: 3—4.

Varicellaria rhodocarpa (Körb.).

Sphaerella araneosa Rehm W. 356.

Perithecien kugelig, schwarz, einem braunen Mycel entspringend.

Schläuche birnförmig, Sporen 8, zweizellig, bräunlich, 12—14 :6—7.

Paraphysen fehlen.

Variolaria communis s. Pertusaria c.

Variolaria discoidea s. Pertusaria globulifera.

Verrucaria caleiseda DC.

Leciographa centrifuga (Mass.) Rehm 381. vide Aspicilia

calcarea.

Placidium insulare Massalongo. Sertum lichenol. in Lotos.

Prag 1856. B

Verrucaria dolosa Hepp. s. V. mutabilis.

Verrucaria hydrela s. Lithoicea hydr.

Verrucaria maeuliformis Krphb.

Arthopyrenia lichenum Arn. W. 343. Vergl. Verrucaria

mutabilis.

Verrucaria margacea s. Lithoicea marg.

Verrucaria mutabilis Borr.

Arthopyrenia lichenum Arnold W. 343. -

Perithecien anfangs eingesenkt, später hervortretend kugelig,

braun. Schläuche 8sporig. Sporen länglich bis keulen- oder stäb-

chenförmig, zweizellig, farblos, 12-—-15:3,5—4. Paraphysen fehlend.

Verruearia pachyderma Arn.

Arthopyreniarivulorum Kernstock in Arnold Tirol XXV, 403.

Perithecien äusserst winzig, schwarz, kugelig, nur wenige Schläuche

enthaltend, ohne Paraphysen. Schläuche bauchig, stiellos. Sporen

verlängert, bald eiförmig, bald ellipsoidisch, in der Mitte eingeschnürt,

zweizellig, 12,5 —14,3:5,4—6,3. Schlauchwand durch Jod weder ge-

bläut, noch geröthet.

Didymosphaeria sphinctrinoides (Zwackh) f. Verruca-

riae Zopf.

Perithecien winzig, punktförmig. Schläuche cylindrisch, 4—6sporig.

Sporen zweizellig, farblos, 17,8—19,6:7,1—8. Paraphysen feinfädig,

1—1,4 u dick.

Verrucaria papillosa Flk.

Arthopyrenia lichenum Arn. W. 343. s. Verr. mutabilis.

Verrucaria polygonia Kbr.

Tichothecium gemmiferum Tayl. W. 350.

Schwarze Perithecien. Schläuche keulig, 8sporig. Sporen zwei-

zellig, länglich-ellipsoidisch, braun, 8—12 :3—4. Paraphysen fehlend,

;

E-

366 W. Zopf.

Verrucaria pyrenophora Krmphb. var. obtusispora Bagl. et Car.

s. Thelidium galbanum.

Verrucaria submersa Borr. s. Lithoicea chlorotica (Ach.).

Phaeospora hetairizans (Leight. Brit. 493.) Arn.

Perithecien eingesenkt, schwarz. Paraphysen fehlend, Schläuche

8sporig, Sporen 8, braun, vierzellig, eingeschnürt.

Verrucaria theleodes Smflt.

Thelidium superpositum (Nyl.). Flora 1865, 357. Th. Fr.

Auf dem Thallus.

Perithecien schwarz. Schläuche 8sporig. Sporen eiförmig, zwei-

zellig, 17—19:7—8. Schläuche durch Jod roth.

Xanthoria parietina (L.).

Coniosporium Physciae (Klchbr.) Sacc. IV. 246. Auf den

Apothecien. je

Conidienpilz. Conidien klein, eiförmig, eine schwarze, pulverige

Schicht bildend.

Celidium varium (Tul.) Rehm 430. Auf Thallus und Frucht-

scheibe.

Apothecien auf verfärbten Stellen der Flechte, erst eingesenkt,

dann hervorbrechend, schwarz. Schläuche keulig-eiförmig, 8sporig.

Sporen länglich, vierzellig, bräunlich werdend, 12—18:5--7, Para-

phygen oben grünbraun werdend. Hypothecium braungrün,

Conida destruens Rehm. Auf Thallus und Apothecien.

Apothecien gesellig, sitzend, mit unberandeter schwarzer Frucht-

scheibe. Schläuche eiförmig, 4—8sporig. Sporen keulig, 2—3zellig,

bräunlich, 9—15:3—5. Epithecium und Hypothecium braun.

Tichothecium parietarium (Linds. Obs. 534).

Mycoporum physciicolum Nyl. Flora 1873, 299,

Perithecien schwarz, kugelig. Sporen 8, braun, länglich oder

eiförmig-länglich, zweizellig, 10—13 :4—6,

Sphaeria Xanthoriae (Wedd. Lich. Agde. 21) Arn. Auf

dem Thallus.

Perithecien eingesenkt, 0,3— 0,4 mm breit, Paraphysen faden-

förmig, Schläuche 6—8sporig. Sporen ellipsoidisch, 10—12:5-—-6 ein-

zellig, farblos.

Zeora sordida s. Lecanora s.

Zeora sulphurea s. Lecanora s.

Zeora Wimmeriana s. Körberiella W,

Kryptogamisches Laboratorium der Universität Halle,

den 9. Juni 1896,

Im unterzeichneten Verlage ist erschienen und durch jede

Buchhandlung des In- und Auslandes zu beziehen:

Lichenologische Untersuchungen

Dr. Gustav Lindau

Privatdocent der Botanik an der Universität Berlin.

Heit.k

Ueber Wachsthum und Anheftungsweise der Rindenlechten.

Mit 3 lithographirten Tafeln.

Gross 4°. VI und 66 Seiten. Preis M. 8.—.

Dresden-N., 1896. C. Heinrich

Verlagshandlung.

Von dem Unterzeichneten sowie durch jede Buchhandlung

des In- und Auslandes ist zu beziehen:

Die Laubmoose

Grossherzogthums Baden

von

Wilh. Baur

Apotheker in Ichenheim.

Sonderabdruck aus „Mittheilungen des Badischen Botanischen Vereins“.

Jahrgang 1894.

80 Seiten 8°. Preis Mark 1,60.

Dresden-N. C. Heinrich

Verlagshandlung.

Repertorium

kryptogamische Literatur

Beiblatt zur „Hedwigia“.

Band XXXV. Januar — Februar. 1896. Nr. 1.

Zur Beachtung!

Mit dem 31. Dezember 1894 schliesst Saccardo’s Sylloge

Fungorum ab. Welchen Werth dieses in der Kryptogamenkunde

einzig dastehende Werk für die Pilzkunde gewonnen hat, darüber

herrscht nur eine Stimme. Für die Mykologie aber wäre es ein

grosser Schade, wenn dieses Werk nicht weiter fortgeführt würde.

Gerade bei der grossen Productivität auf mykologischem Gebiete ist

es dem Einzelnen schwer, wenn nicht unmöglich, alle Literatur zu

sammeln und so fortwährend einen Ueberblick über die Arten, die

im Laufe eines Jahres veröffentlicht werden, zu behalten.

Auf Veranlassung von Herrn Prof. Dr. P. A. Saccardo hat sich

deshalb die Redaction der „Hedwigia‘“ entschlossen, im Interesse

aller betheiligten Mykologen die Fortführung der Sylloge

in Form eines „Elenchus Fungorum“, welcher alljährlich

die Namen und Literaturcitate der neuen Arten bringen

soll, zu geben. Für 1895 hat Herr Prof. Saccardo selbst die

Zusammenstellung besorgt. Dieselbe wird als Repertorium VII mit

besonderer Paginirung herausgegeben werden; dafür soll bei der

Besprechung der Pilzarbeiten in den übrigen Repertorien von nun

an blos ein kurzer Hinweis enthalten sein, wenn neue Arten be-

schrieben werden (N. A.). Der Elenchus für 1895 wird mit

dem 1. Heft ausgegeben.

Die Redaction hofft, mit dieser Neuerung den Mykologen einen

hervorragenden Dienst zu erweisen, und bittetalleFachgenossen

durch Mittheilung von Literatur oder Berichtigungen diese

Bestrebungen gütigst unterstützen zu wollen.

Redaction und Verlag der „Hedwigia‘“.

Hedwigia Bd. XXXV., 1890. 1

en Me 5 FE Zu

(2)

I. Allgemeines und Vermischtes.

Arthur, J. C. The distinction between animals and plants. (The

American Naturalist XXIX. 1895. p. 961.)

Baumann, A. Die Moore und die Moorkultur in Bayern. (Forstl.

naturw. Zeitschr. 1896. p. 15.)

Verf. giebt bei einer Aufzählung der charakteristischen Moorpflanzen auch

die Pteridophyten, Muscineen und Lichenen,

Campbell, D. H. The structure and development of the Mosses and

Ferns (Archegoniatae). london (Macmillan) 1895. Pr. 14 sh.

De Wildeman, E. Frederic Schmitz. (l.a Notarisia 1895. p. 30.)

Forsyth Major, C. J. et Barbey, W. Kalymnos, etude botanique.

(Bull. de l’'Herb. Boiss. 1896. p. 20.)

In der Aufzählung sind wenige Pteridophyten, Moose und Flechten angeführt,

Holzinger, J. M. Report on a collection of plants made by J. H.

Sandberg and assistants in Northern Idaho, in the year 1892,

(Contrib. from the U. S. Nation. Herbarium III. 1895. n. 4. 23. nov.)

Unter Anderem sind neu: Orthotrichum Holzingeri Ren. et Card., Bryum

Sandbergii Holzing., Peronospora Giliae EIl. et Ev.

Jungfleisch. LouisPasteur. (Journ. de pharm., et de chien. 1895. 15. Oct.)

Pasteur, Louis 1822—95. (Biolog. Centralbl. XV. 1895. n. 22.)

Matsudaira, H. List of plants, collected in Kurile Islands by T.

Kitchara. (The Tokyo Bot. Mag. 1895. p. 466.) Japan. Mit

lateinischen Pflanzennamen.

Wenige Flechten und ein Equisetum genannt,

Pringsheim, N. Gesammelte PERRBNERGEN II. Jena (G. Fischer).

Mit 32 Taf. 1895. Pr. 15 M.

Strasburger, E., Noll, F., Schenck, H. und Schimper, A. F. W. Lehr-

buch der Botanik für Hochschulen. 2. Aufl. Jena (G. Fischer) 1895.

Pr. 7.50 M.

Das so bald erfolgte Erscheinen der 2. Auflage des bekannten Lehrbuches

spricht für seine Vortrefflichkeit,

II. Myxomyceten.

Sheldon, E. P._ A Study of some Minnesota Mycetozo. (Minne-

sota Botan. Stud. 1895. p. 462.)

Aufzählung von 42 Myxomyceten-aus Minnesota. Leider sind wieder alte

Namen aus sogenannten Prioritätsgründen hervorgesucht worden; und nicht

genug damit, die in Minnesota beobachteten Arten umzutaufen, führt Verf. in Än-

merkungen auch die Umtaufung der übrigen Arten durch. Das sicht schr nach

der Art aus, wie OÖ. Kuntze seine Umtaufungen vollzieht. Für Tubulina Pers.

steht Tubifera Gmel,, für Arcyria Hill. Clathrodes Adans., für Spumaria Pers.

Mucilago Batt., für Chondrioderma Rost. Diderma Pers. und Leangium Link.

III. Schizophyten.

Arnould, E. Influence de la lumiöre sur les animaux et sur les

microbes, son röle au hygiene. (Rev. d’hygiene 1895. n. 6. p. 511.)

Babes, V. Beobachtungen über die metachromatischen Körperchen,

Sporenbildung, Verzweigung, Kolben- und Kapselbildung patho-

gener Bacterien. (Zeitschr. f. Hygiene XX. 1895, p. 412.)

Bolley, H. L. Ueber die Constanz von Bacterienarten in normaler

Roh- (fore) Milch. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2, Abth. I. 1895. p. 795.)

— and Hall, C. M. Cheese curd inflation: its relation to the bacte-

rial flora of fore milk. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. I.

1895. p. 788.) c. fig.

Crisafulli, G. Sulla decomposizione dell’ acido ippurico per mezzo

dei microorganismi. Roma 1895.

Freudenreich, E.v. Ueber den Stand der bacteriologischen Forschung

auf dem Gebiete des Käsereifungsprocesses. (Centralbl. f. Bact.

u. Par. 2, Abth. I. 1895. p. 854.)

Glaser, F. Zur Gallertausscheidung in Rübensäften. (Centralbl. f.

Bact. u. Par. 2. Abth. I. 1895. p. 879.)

Havemann, H. Ueber das Wachsthum von Microorganismen bei

Eisschranktemperatur. Diss. Rostock 1894.

Kedrowski, W. Ueber die Bedingungen, unter welchen anaörobe Bac-

terien auch bei Gegenwart von Sauerstoff existiren können.

(Zeitschr. f. Hygiene XX. 1895. p. 358.)

Lepierre, Ch. Recherches sur la fonction fluoreseigene des microbes.

(Ann. de I’Inst. Pasteur 1895. p. 643.)

Omelianski, V. Sur la fermentation de la cellulose. (Compt. rend.

CXXI 1895. n. 19. 4. Nov.)

Sewerin, $. A. Die im Miste vorkommenden Bacterien und deren

physiologische Rolle bei der Zersetzung desselben. (Centralbl, f.

Bact. u. Par. 2. Abth. I. 1895. p. 799.)

Stavenhagen, A. Einführung in das Studium der Bacteriologie und

Anleitung zu bacteriologischen Untersuchungen für Nahrungsmittel-

chemiker. Mit 83 Fig. Stuttgart (F. Enke) 1895. Pr. 4 M.

Stutzer, A., Burri, R. und Herfeldt, E. Das Verhalten von Bacterien

ansteckender Viehkrankheiten gegen Säuren und mit Säure impräg-

nirter Torfstreu. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth, I. 1895. p. 841.)

Wüthrich, E. und Freudenreich, E.v. Ueber den Einfluss der Fütterung

auf den Bacteriengehalt des Kuhkothes. (Centralbl. f. Bact. u. Par.

2. Abth. I. 1895. p. 873.)

sn =

6 Va Du

Pr wre

(4)

IV. Algen.

De-Toni, G. B. Sylloge Algarum omnium hucusque cognitarum.

Vol. II. Fucoideae. Patavi 1895. Sumptibus auctoris, typis

Seminarii. gr. 8°. XII. 638 pp.

Wer sich mit der vergleichenden Untersuchung von Chlorophyceen oder

Bacillariaceen beschäftigt hat, der wird erfahren haben, welche Erleichterung

ihm für seine Arbeit der Gebrauch von De-Toni's Sylloge gewährt hat, und

wer sich mit den braunen Algen oder Florideen beschäftigt, der wird wünschen,

auch für diese schon eine solche Zusammenstellung benutzen zu können. Für

die braunen Algen ist dieser Wunsch nun erfüllt worden und mit Freuden be-

grüssen wir den dritten Band des genannten Werkes, welcher die Fucoideen

enthält. Indem wir den Verf. zu dem über Erwarten schnellen Fortschreiten

seiner mühsamen Arbeit beglückwünschen, welche allgemeine Anerkennung und

Dankbarkeit verdient, sprechen wir zugleich den Wunsch aus, dass es ihm und

uns vergönnt sein möge, die übrigen Algengruppen bald, in ähnlicher Weise

bearbeitet, erscheinen zu sehen. Freilich wird das Werk dann noch nicht ab-

geschlossen sein, sondern wird immer wieder der Supplemente bedürfen, um

annähernd vollständig zu sein; ist doch die Zahl der im Jahre 1894 als neu ver-

öffentlichten Algenarten (excl. Bacillariaceen) nach des Ref. Zusammenstellung

nicht weniger als 260! Die Hauptsache aber ist, dass erst einmal der Grund

gelegt ist; das Neue wird sich mit ebenso geringen Schwierigkeiten hinzufügen

lassen, wie die kleinen bei so grossen Unternehmungen unvermeidlichen, noth-

wendigen Verbesserungen.

Das System, welches in diesem Bande benutzt wird, ist vom Verf. bereits

1891 in seinen Grundzügen veröffentlicht; es stimmt auch in den Familien und

Gattungen wesentlich mit dem von Kjellman in den natürlichen Pflanzen-

familien befolgten überein, und da sich die letztere Bearbeitung in den Händen

der meisten Botaniker befinden wird, kann sich Ref. oft auf sie beziehen.

Während aber Kjellman die Dietyotaceengar nicht inseinePhaeophyceen

aufgenommen hat, sind sie bei Verf. als Tetrasporinae zwischen die Cyclo-

sporinae und Phaeozoosporinae eingeschaltet. Dass sie mit vollem Rechte

den Phaeophyccen zugerechnet werden, geben wohl die meisten Algologen

zu, vielleicht stehen sie den Phaeozoosporeen nicht so nahe wie die

Fucaceen, allein ob die letzteren beiden besser nebeneinander oder die

Dictyotaceen zwischen sie, wie bei De-Toni, zu setzen sind, ist mehr eine

Formfrage; bekanntlich ist ja das System nicht nur als eine Reihe oder in einer

Ebene ausgebreitete Verzweigung zu denken, und deshalb kommt in einer

schriftlichen Darstellung Manches hintereinander, was eigentlich nebeneinander

stehen sollte.

Verf. beginnt also mit den höchst entwickelten Fucoideae, den Cyclo-

sporinae, die er in die Familien: Sargassaceae (Decne.) Kütz,, Fucaceae

(Lamour.) Kjellm., Himanthaliaceae Kjellm. und Durvillacaceae Ültm.

eintheilt, welche Eintheilung als cine schr zweckmässige bezeichnet werden

kann. Die 16 zu den Sargassacceen gehörenden Genera lassen sich dann

wieder in verschiedener Weise zu Gruppen und Untergruppen vereinigen; die

erste Gattung ist die schwierige Gattung Sargassum mit 190—200 mehr oder

weniger sicheren Arten, also die umfangreichste aller hier behandelten. Die

ersten 166 Arten werden nach der von J. G. Agardh in seinem Werke

über die australischen Saragassen gegebenen Eintheilung zusammengestellt.

Es folgen dann von 167—193 Species imperfecte descriptae, dubiae aut steriles,

die nach ihrem Vorkommen in den oceanischen Gebieten geordnet sind.

(5)

194—198 sind zweifelhafte Formen von Halochloa und Carpacanthus Kütz,,

199— 209 sind Synonyme. — Zwischen die Gattungen Carpophyllum (7 sp.)

und Turbinaria (9 sp.) schiebt Verf. als zweifelhaft und deshalb in der

Gattungsübersicht nicht erwähnt Contarinia ein (1 sp.: C. australis). Die

übrigen 13 Gattungen mit zusammen 78 Arten sind dieselben, welche Kjell-

man aufführt; zu bemerken ist noch, dass Blossevillea arabica Kütz. als

zweifelhafte 25. Art an Cystophora und ebenso Carpodermia (1 sp.) mit

Zweifel an Cystoseira angeschlossen wird.

Die 6 Gattungen der Fucaccen sind wie bei Kjellman aufgefasst, sie

umfassen 37 (resp. 42) Arten, Fucus Wrightii ‚Harv. wird nur mit Zweifel

dieser Gattung zugerechnet.

Die Himanthaliaceae sind ausser durch die eine bekannte Art durch

die fragliche H. australis Sond. vertreten, während H. gladiata Kütz. zu

Xiphophora Billardieri, H. Durvillaeci Bory vielleicht zu Lessonia

Suterii zu ziehen ist.

Die Durvillaeaceae Oltm. sind gegenüber den anderen Familien dadurch

charakterisirt, dass die Conceptacula nicht auf bestimmte Abschnitte des Thallus

beschränkt sind. Hierher gehören die Gattungen: Durvillaca (3 sp.), Sarco-

phycus (2 sp.), Splanchnidium (1 sp.), Notheia (1 sp.). Es fällt dabei auf,

dass Verf. die Angabe von Mitchell und Whitting (1893), deren Arbeit er

citirt, unberücksichtigt lässt, nach welcher die Conceptacula geschlechtslose

Sporangien enthalten, so dass die Pflanze gar nicht zu den Fucaceen, sondern

zu den Phaeozoosporcen, und zwar als Vertreterin einer eigenen Familie,

gehören würde. Ref. hält diese Angabe aber nach dem, was er an Alkohol-

material einer Pflanze vom Cach (in der Sammlung des Dr. H. Schenck) ge-

sehen hat, für zutreffend. Verf. nennt die betreffenden Organe Oogonien, die

Zahl der Oosporen und die Beschaffenheit der Antheridien lässt er unbestimmt.

Die Tetrasporinae werden von der cinen Familie Dietyotaceae ge-

bildet, in deren Gliederung Verf. sich ganz an J. G. Agardh (1894) anschliesst:

A. Zonarieae: Gymnosorus ]J. Ag. (3 sp.), Zonaria (5 sp. und 6 zweifelhafte),

Homoeostrichus ]J. Ag. (5 sp.), Chlanidote J. Ag. (1 sp.); B. Padincae:

Microzonia ]. Ag. (1 sp.), Stypopodium (1 sp.), Lobophora ]J. Ag. (1 sp.),

Taonia (3 sp.), Padina (9 sp.), C. Spathoglosseae: Spathoglossum

(8 sp), Stoechospermum (4 sp.), Haliseris (17 sp.); D. Dietyoteae:

Dictyota (37 sp. in 4 Sektionen und 10 zweifelhaften sp.), Pachydictyon

J. Ag. (3 sp), Dilophus J. Ag (14 sp.), Glossophora ]J. Ag. (12 sp.), Lobo-

spira (1 sp.). Die Gattung Chlanidote wird übrigens von Agardh weiter

im Texte Chlanidophora genannt.

Bei den Phaeozoosporinen finden wir ausser den Familien, die auch

Kjellman anführt, noch 3, welche, den Syngeneticae Rostaf. entsprechend,

als Isoblephareae zusammengefasst, den Heteroblephareae, deren

Schwärmsporen 2 ungleiche Cilien besitzen, gegenübergestellt werden; beide

Gruppen bilden die Isogonicae Kjellm. Es ist dies vielleicht ein ganz guter

Ausweg, um die kleine Gruppe der Syngeneticae im Algensystem überhaupt

unterzubringen, allein, ihre wirkliche Verwandtschaft dürfen sie schwerlich hier,

sondern bei den Flagellaten finden, bei denen eine strenge Trennung von

farblosen, chlorophyligrünen und braungelben Formen eben nicht durchzuführen

ist; dort würde sich vielleicht auch Hydrurus am ersten anschliessen lassen.

Jedenfalls möchte Ref. die Beschaffenheit der Cilien für ein wichtigeres Merk-

mal als die Farbe ansehen und Schwärmsporen mit zwei seitlichen, ungleichen,

nach vorn und hinten gerichteten Cilien als Charakteristicum der Phaeophy-

ceen festgehalten wissen,

we ;

Was zunächst die echten Phaeozoosporeen betrifft, so sei aus ihrer

Systematik in der Sylloge Folgendes hervorgehoben. Die Ralfsiaceae und

Lithodermaceae bilden eine durch die Wachsthumsverhältnisse charakteri-

sirte Gruppe. Beiden Laminariaceae ist statt Ulopteryx Kjellm. der Name

Undaria Suring. gewählt. Die 28 aufgezählten Laminaria-Arten werden

nach dem Vorhandensein und Fehlen der Schleimkanäle, wie bei Guignard,

gruppirt; 10 Arten sind zweifelhaft. Arthrocladia(1sp.) und vielleicht Chnoo-

spora (4 sp.) bilden die Familie Arthrocladiaceae, die sich durch die

Stellung der Fructificationsorgane von den Desmarestiaceae unterscheidet.

Buffhamia Batt. 1895 wird als erste Gattung der Elachistaceae, Coelo-

cladia Rosenv. und Symphyocarpus Rosenv. (1893) werden bei den En-

coeliaceae angeführt. Chlorosiphon Shuttleworthianus gehört viel-

leicht zu Lithosiphon. Acinetospora (1 sp.) und Giffordia (4 sp.) sind

generisch von Ectocarpus getrennt; die endophytischen Ectocarpus-

Arten werden zu Streblonema gezogen; für Streblonemopsis Val. ist

Entonema Reinsch gesetzt; Phaeocladia Gran (1 sp.) wird den Ectocar-

paceae zugerechnet. Hinter dieser Familie wird eine grössere Anzahl zweifel-

hafter oder dem Verf, ganz unbekannter Gattungen resp. Arten angeführt:

Desmithamnion Reinsch, Nodaria Sperk, Actinema Reinsch, Ectocar-

pidium Sperk, Phacostroma Kuck., Ulonema Fosl., Stegastrum

Reinsch, Melostictis Reinsch, Schizogonium ?aureum Kütz. — Verf.

zählt sogar die Thorea- und Compropogon-Arten hier auf, obwohl er die

erstere Gattung für verwandt mit Batrachospermum, die letztere mit Le-

manea hält. Es folgen dann noch die Phaeothamniaceae Lagerh. und die

Phaeocapsaceae des Verf., letztere mit den Gattungen: a) marine: ?Gloeo-

thamnion Cienk. (1 sp.), Pulvinaria Reinh. (1 sp.), Phaeocystis Lagerh. (3 sp.);

b) im süssen Wasser: Entodesmis Borzi (1 sp.), Naegeliella Corr. (1 sp.),

Phaeodermatium Hansg. (1 sp.\, Phaeococcus Borzi (1 sp.); von diesen

Gattungen ist es nicht für alle sicher, ob sie echte Phaeophyceen sind.

Die Isoblephareae des Verf. enthalten 3 Familien: Hydruraceae

(Hydrurus 1 sp. und Hydrurites ? Reinsch), Chrysomanidinae Hansg,

(Synerypta Volvox)undChromophytonaceae (Chromophytonmit2sp.).

Im Ganzen sind über 1000 Arten beschrieben. Synonymen und Standorts-

angaben sind im Allgemeinen offenbar mit grosser Sorgfalt zusammengestellt.

Bei vielen Arten findet sich ausser der ausführlichen Diagnose noch eine ge-

naucre Beschreibung der einzelnen Theile in der Weise und vielfach mit den

Worten J. Agardh’s in dessen Species Algarum. Dass ein ausführliches auch

die Synonyme umfassendes Register den Gebrauch des Werkes erleichtert, darf

nicht zu erwähnen vergessen werden. Einige kleine Versehen rein äusserlicher

Natur, die dem Ref. aufgefallen sind, kann derselbe dem Verf. mittheilen. Ob

sich aber in den Beschreibungen oder anderen Angaben einzelne Unrichtigkeiten

finden, lässt sich natürlich nicht bei einer solchen Durchsicht, wie sie der Ref.

vornimmt, sondern nur gelegentlich beim wirklichen Gebrauche des Buches

feststellen. Einen Vorwurf wird man daraus, vorkommenden Falles, dem Verf.

nur selten machen können, und das im Eingange des Referates über den Werth

des Buches ausgesprochene Urtheil wird dadurch hoffentlich nicht beeinträch-

tigt werden. Möbius (Frankfurt a. M.)

De Toni, G.B. Phyceae Japonicae novae addita enumeratione algarum in

ditione maritima Japoniae hucusque collectarum. Alghe marine del

Giappone ed isole ad esso appartenenti con illustrazione di alcune

specie nuove (con 2 Tavole). (Estratto della Memorie del R. Istituto

Veneto di scienze, lettere ed arti. Vol. XXV. No. 5.) Venezia

1895. gr. 4°. 78 pp. 2 Taf.

Die hier vom Verf. veröffentlichte Zusammenstellung der bisher bekannten

japanischen Meeresalgen ist ein werthvoller Beitrag zur Kenntniss der geogra-

phischen Verbreitung der Algen. Der Liste selbst geht eine längere italienisch

geschriebene Einleitung voraus, deren erstes Kapitel sich mit der marinen Al-

genflora im Allgemeinen beschäftigt. Das zweite Kapitel behandelt ziemlich

ausführlich die Geschichte der Erforschung der japanischen Meeresalgen,; um

dieselbe haben sich besonders verdient gemacht: Kaempfer (169), Thun-

berg (1774), Tilesius und Horner (1804), Harvey, G. v. Martens, Surin-

gar, Dickie, Kjellman, Hariot und Heydrich. In letzter Zeit hat auch

ein japanischer Botaniker, Okamura, sich mit den Meeresalgen des Gebietes

eingehend beschäftigt und, durch Ueberlassung von Material an Schmitz und

den Verf. selbst, diese zu mehreren Abhandlungen über japanische Algen ver-

anlasst. Im folgenden Kapitel wird die Beschaffenheit des Gebietes besprochen

und im nächsten die Eigenthümlichkeit seiner Algenflora. Dieselbe zeigt einer-

seits mit der der arktischen, andererseits mit der der tropischen Meere Be-

ziehungen und zwar erklärt sich das Vorkommen zahlreicher Arten, die sich

im Behringsmeer, im Ochotskischen und arktischen Meere wiederfinden, wie

Agarum Turneri, Scytosiphon lomentarius, mehrerer Florideen und

Chlorophyceen, durch eine von Norden in das japanische Meer fliessende

kalte Strömung. Der südliche Charakter des Gebietes zeigt sich z. B. in dem

Auftreten zahlreicher (26) Sargassum-Arten. Charakteristisch für das Gebiet

sind die Genera Cystophyllum und Coccophora, ferner Ecklonia, die

Gelidiaceen, die betreffenden Gigartina-, Gymnogongrus-, Graci-

laria-, Laurencia-, Polysiphonia- und Gloiopeltis-Arten; ausser Coc-

cophora sind ihm eigenthümlich Myclophycus, Undaria, Acantho-

peltis, Callophyllis rhynchocarpa und japonica, Cystoclonium ar-

matum; es fehlen Vertreter der Gattungen Callithamnion, Antitham-

nion und Rodochorton, während sich von den Ceramiaceen nur hier

findet Campylaephora hypneoides. Schliesslich wird auch eine Anzahl

von Arten angeführt, welche das Gebiet mit der Ostsee gemeinsam hat. In

der nun folgenden Liste, welche im Ganzen 304 Arten enthält, behandelt Verf,

der Reihe nach die Florideen (nach dem System von Schmitz), die Fuco-

ideen (nach Kjellman), die Chlorophyceen (nach seiner Sylloge) und die

Myxophyceen {nach Bornet und Flahault und Gomont); Bacillaria-

ceen und Peridineen fehlen. Den Namen sind Litteraturcitate und Syno-

nyma nur soweit beigefügt, als es dem Verf. für die Identificirung der Arten

nothwendig oder erwünscht erschien; sodann ist ihr Vorkommen in Japan mit

dem Namen des Sammlers oder Bearbeiters und gelegentlich auch der japanische

Name der Alge angegeben. Lateinische Diagnosen finden sich nur bei einigen

zweifelhaften älteren Arten und bei den neuerdings vom Verf. und von Okamura

veröffentlichten Arten, ausserdem sind an einigen Stellen lateinische Bemerk-

ungen eingeschaltet. Die von Reinbold (Hedwigia 1895) aufgestellte Gattung

Gloiothamnion tauft Verf., da der Name schon von Cienkowski für eine

andere Alge vergeben war, in Reinboldiella um. Die Alge heisst also Rein-

boldiella Schmitziana (Reinb.) DT. Auf den beiden von Okamura ge-

zeichneten Tafeln finden wir die Habitusbilder und Analysen der vom Verf.

kurz vorher in den Atti del R. Istituto Veneto veröffentlichten Algen: Placo-

phora latiuscula, P. linearis und Hypnea simpliciuscula. Der Ab-

handlung sind noch beigefügt eine Uebersicht über die Lage der angeführten

Standorte, eine Bibliographie und ein alphabetisches Verzeichniss der erwähnten

Algen. Möbius (Frankfurt a. M.).

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(8)

Gutwinski, R. Prodromus florae algarum galiciensis. (Abhandl. der

Krakauer Akademie. Math. naturw. Kl. 1895.)

In der polnisch geschriebenen Einleitung giebt der Verf. eine historische

Uebersicht der in Galicien bis 1894 angestellten algologischen Beobachtungen,

Er unterscheidet eine Berg- und gemischte Formation. Die erstere umfasst

7,0317 0), der aufgeführten 1057 Species, die letztere alle übrigen Formen, welche

sowohl im Bergland, als auch in der Hügelregion und Ebene vorkommen. Vor-

züglich sind es Diatomeen und Desmidiaceen; aufgezählt werden sie nach De

Toni's Sylloge Algarum und nach Hausgirg’s Prodromus II. Doch wird die

Gattung Sphaerogonium Rostaf. im Gegensatz zu Hansgirg wieder restituirt.

Bemerkungen macht der Verfasser ausserdem bei den Arten: Cosmarium Klebsii

Gutw., Cosm. phascolus var, elevatum Nordst., Euastrum Satkii Gutw., Navicula in-

curva var. minor Gutw. und Eunotia gracilis W.Sm. W.Schmidle (Mannheim).

Loew, 0. Nachtrag über das Kalkbedürfniss der Algen. (Bot. Cen-

tralbl. LXIV. 1895. p. 433.)

Murray, G. An introduction to the study of seaweeds. New York

(Macmillan & Co.) 1895. Pr. 1,75 Doll.

Schroeder, BB Kleinasiatische Algen. (Nuova Notarisia 1805,

p. 99.)

Es werden 48 Species, marine und Süsswasser-Formen, aufgezählt, die von

Oberstabsarzt Schroeter bei Mersine und Missis gesammelt wurden, Vorzüglich

sind es Diatomeen und zwar, die marinen Arten ausgenommen, fast dieselben

Formen, wie sie auch im Rheine und in der Donau gefunden werden, und

welche man »in biologischer Hinsicht zu einer fluviophilen Formation zu-

sammenfassen könnte«. W. Schmidle (Mannheim).

— Die Algenflora der Hochgebirgsregion des Riesengebirges. (Jahresb.

d. Schles. Ges. f. vat. Cult. Zool, bot. Sect. 1895.)

Verf., ein guter Kenner der schlesischen Algenflora, unternimmt es in

dieser Arbeit, die aus der Hochgebirgsregion des Riesengebirges bisher bekannt

gewordenen Algen zusammenzustellen. Einen grossen Theil der Arten hat

Verf. selbst beobachtet, ein anderer Theil wurde von Schroeter, Hieronymus,

Hansgirg und älteren Forschern nachgewiesen. Im Ganzen sind 293 Arten be-

kannt, wovon für Schlesien 79 Arten und Varietäten, die aufgeführt werden,

neu sind. Eine Zahl von Arten sind für die tieferen Regionen bisher bekannt,

für die alpine Region dagegen neu. Zu vielen Arten giebt Verf. ausführliche

diagnostische Bemerkungen. Neu sind: Cosmarium Meneghinii Breb. var. An-

derssonii, Staurastrum turgescens de Not. var. sudeticum. Das am Aupafall

vorkommende Stigonema (vom Verf. als S. informe angegeben) ist typisches S.

mamillosum Ag.

Tassi, Fl. Altra contribuzione alla flora senese: Alghe e piüı special-

mente Oscillarieae. (Atti de Reale Acc. dei Fisiocritici. 4 ser. VII

1895.)

Aubert, A. B. Liste partielle des Diatomdes d’Orono, Maine U, S. A,

(Le Diatomiste II. 1894. p. 150.)

(9)

Müller, 0. Die Bacillariaceen im Plankton des Müggelsees bei Berlin.

(Zeitschr. f. Fischerei und deren Hilfswissensch., Mittheil, d. deutsch.

Fischereivereins. 1895. Hf. 6.)

— Rhopalodia, ein neues Genus der Bacillariaceen. (Engl. Jahrb.

XXII. 1895. p. 54.) c. tab. 2

Verf. begründet auf die weit verbreitete Epithemia gibba (Ehrbg.) Kütz.

und auf mehrere verwandte ostafrikanische Arten ein neues Genus. Er setzt

die Unterschiede, die hauptsächlich in der Schalenausbildung zu suchen sind,

näher auseinander und unterscheidet zwei Sippen im Genus.

1. Epithemioideae. Thecae bilateral-symmetrisch. Dazu gehören R. Stuhl-

manni n. sp., R. uncinata n. sp., R. gracilis n. sp., R. impressa n Sp. R. paral-

lela (Grun.) O. Müll, R. gibba (Ehrbg.) OÖ. Müll, R. ventricosa (Grun.) ©. Müll.

2. Eurhopalodieae. Thecae asymmetrisch. R. ascoidea n. Sp., R. vermi-

cularis n. sp., R. hirudiniformis n. sp., R. asymmetrica n. Sp.

Die einzelnen Formen sind abgebildet nach dem aus Ostafrika stammenden

Material. Am Schluss bringt Verf. eine Erklärung seiner Termini, die für eine

genaue Beschreibung der Schalen ganz unerlässlich sind.

Schilbersky, K. Beitrag zur Biologie der Diatomaceen. (Oesterr. Bot.

Ztschr. 1895. p. 434.)

Verf. geht auf die in einer früheren Arbeit von ihm berührte Phototaxis der

Diatomeen ein und weist die Richtigkeit seiner damaligen Untersuchungen nach.

Chodat, R. et Huber, J. Sur le developpement de l’Hariotina Dang.

(Bull. de la Soc. Bot. de France 1894. Sess. extraord. en Suisse

1. et 2. part. 1895. p. CXLIL) c. fig.

Die Verff. konnten die merkwürdige Älge von neuem untersuchen und

verschiedene Irrthümer in Dangeard's Beschreibung richtig stellen. Nach ihnen

gehört die Alge nicht zu den Protococcaceen, sondern zu den Volvocincen,

wo sie bei der Gruppe von Pediastrum in der Nähe von Coelastrum ihren Platz

erhalten würde.

Cleve, A. En röd Bulbochaete. (Botan. Notiser 1895. p. 247.)

De Wildeman, E. Vaucheria Schleicheri n. sp. (Bull, de l’Herb.

Boiss. 1895. p. 588.) c. tab.

Beschreibung der neuen aus der Schweiz stammenden Art.

__ Cerasterias Reinsch et Tetracladium de Wild. (La Notarisia

1895. p. 17.)

Verf. setzt die Unterschiede zwischen beiden Gattungen auseinander;

letztere gehört, wie schon früher von De Wildeman angegeben ist, zu den Pilzen.

— Notes algologiques. (La Notarisia 1895. p. 36.) c. tab.

1. Micrasterias crux-melitensis (Ehrh.) Ralfs, Bemerkungen über die

Variabilität der Alge.

2. Sur le genre Palmodactylon Naeg. Cfr. in Bull. de l’Herb. Boiss. 1895.

p. 328.

3. Sur quelques especes du genre Endoderma.

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(10)

4. Pediastrum tricornutum Borge. Beschreibung der Art und der von

Schmidle aufgestellten Varietäten. Verf, giebt einige kleine Ergänzungen dazu

Die Tafel stellt diese Art dar.

Jost, L. Beiträge zur Kenntniss der Coleochaeteen. (Ber. d. Deutsch.

Bot. Ges. 1895. p. 433.) c. tab,

Verf. giebt in dieser Abhandlung seine Beobachtungen an Coleochaete-

Arten, besonders an der neuen C. Nitellarum. Die Untersuchungen erstrecken

sich sowohl auf den vegetativen Aufbau, wie auch auf den Bau und die Ent-

wickelung der Geschlechtsorgane. Den Befruchtungsact selbst konnte er eben-

falls nicht beobachten. Es würde zu weit führen, die vielerlei Einzelheiten, die

theils bisherige Ansichten widerlegen, theils erweitern, hier anzuführen. Die

Arbeit ist für unsere Kenntniss von Coleochaete sehr wichtig und muss vom

Specialforscher eingehend zu Rathe gezogen werden.

Möbius, M. Beitrag zur Kenntniss der Algengattung Pitophora.

(Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1805. p. 356.) ec. tab.

Verf. untersucht eine Pitophora-Art aus Australien, P. affinis. Er beschreibt

zum ersten Male die eigenthümlichen Haftorgane der Pflanze und ferner die

Bildung der Akineten genauer, als die Autoren vor ihm, Auch die Keimung

der Akineten konnte er feststellen. In einer Tabelle giebt er die geographische

Verbreitung der bisher bekannten Arten der Gattung.

Montemartini, L. Schäden von Warmhauspflanzen, durch Protococeus

caldariorum (Magn.) verursacht. (Zeitschr. f. Pfllanzenkr. 1895. p. 277.)

Die Algen hielten durch ihren dichten Ueberzug das Licht von den Blättern ab,

Nandor, F. Die Characeen mit besonderer Rücksicht auf die in

Ungarn beobachteten Arten. Budapest 1893. 4%. c. tab. 5. et fig.

ung. u. deutsch.

Die umfangreiche Arbeit bringt in der Einleitung die allgemeine Morpho-

logie der Characeen, die Entwickelung des vegetativen Thallus, die Entwickelung

der Fructificationsorgane, die Physiologie und endlich die Erörterung der

systematischen Stellung der Gruppen. Im speciellen Theil werden die einzelnen

Arten beschrieben, besonders genau die in Ungarn vorkommenden, Bestimmungs-

tabellen erleichtern die Auffindung einer Art.

De Toni. Il Lithoderma fontanım Flah. (Academia Pontificia de’

Nuovi Lincei 1895.)

Nach Aufzählung sämmtlicher Süsswasser-Florideen und -Fucaceen bespricht

De Toni speciell die Verbreitung der Arten von Lithoderma. Während die

marinen Formen das Maximum ihres Auftretens zwischen dem 45. und 48. Grad

nördlicher Breite erreichen, trifft man die Süsswasserarten nur in Europa, und

zwar Lithoderma fluviatilis in Schweden, Deutschland und Böhmen, Lithoderma

fontanum, welches wahrscheinlich nur eine üppigere Form der vorgenannten

Art ist. in Frankreich, Böhmen, Steiermark und Krain. Neuerdings fand der

Verfasser die letztgenannte Art auch in Italien bei Galliera in Venetien an

Felsen eines kleinen Bächleins. W. Schmidle (Mannheim).

(11)

Okamura, K. New or little known Algae from Japan. (The Tokyo

Bot. Mag. 1895. p. 472.) c. tab. Jap. und engl.

Beschreibung der neuen Arten: Grateloupia divaricata, Polyopes polyideoides,

Uryptonemia angusta (Harv.) Okam. (= Gymnogongrus ligulatus var. angustus);

zu Cryptonema Wilsoni J. Ag. werden ausführliche Bemerkungen gegeben.

V. Pilze.

Boudier, E. et Fischer, EE Rapport sur les esp&ces des Champignons

trouvees pendant l’assemblee ä Geneve etc. (Bull. de la Soc. Bot.

deFrance 1894. Sess. extraord. en Suisse 2. part.1895. p. CCXXXVII.)

Neu sind: Ciliaria nivalis Boud., Helvella alpestris Boud., Uromyces Alche-

millae-alpinae E. Fisch., Ganoderma valesiacum Boud., Russula fragilis var.

alpestris Boud,, Cortinarius alpinus Boud. Die Beschreibungen der Arten Bou-

dier's finden sich bereits im Bull. de la Soc. Myc. de Fr. 1895. Heft 1.

Bourquelot, E. et Bertrand, G. La laccase dans les Champignons.

(Compt. rend. CXXI. 1895. n. 22. 25 nov.)

Bourquelot, E. et Herissey, H. Sur les propridetes de l’&mulsine des

Champignons. (Compt. rend. CXXI. 1895. n. 20. 11 nov.)

— — Arret de la fermentation alcoolique sous l’influence de sub-

stances secretces par une moisissure. (Compt. rend. de la Soc,

de biol. 1895. p. 632.)

Cheney, L. $. Parasitic fungi of the Wisconsin Valley. (Trans. of

the Wiscons. Acad. of. Sc., Arts and Lett. X. 1895. p. 69.)

Clautriau, 6. Ftude chimique du glycogene chez les champignons

et les levures. (Mem. couronn. et autr. mem. publ. par l’Ac. roy.

de Belgique LIII. 1895.)

Cooke, M. C. Introduction to the study of fungi: their organography,

classification and distribution for the use of collectors. London,

(libr. Black). 1895. Pr. 14 sh.

Costantin, J. et Dufour, L. Nouvelle Flore des Champignons. Avec

4166 Fig. 2. ed. Preis geb. 6 Fr.

Das ausserordentlich brauchbare Buch ist in 2. Auflage erschienen, damit

anzeigend, dass es seiner Bedeutung nach die entsprechende Verbreitung ge-

funden hat. Wer Pilze, hauptsächlich die Hymenomyceten, schnell bestimmen

will, dem kann das Buch auf das Angelegentlichste empfohlen werden, zumal

der Preis ausserordentlich niedrig ist.

Costantin, J. et Matruchot, L. Experiences sur le blanc de Cham-

pignon obtenu par semis en milieu sterilise. (Compt. rend. CXXI.

n. 24. 9 Dez. 1895. p. 901.

D’Almeida, V. et Da Motta Prego, J. Les maladies de la vigne en

Portugal pendant l’annde 1894. (Ann. de la science agronom,

Frang. et &trang. 2 ser. an. I. tom II. 1895. p. 140.)

a Sa re

ar ka Me.

(12)

Ellis, J. B. and Everhart, B. M. New species of Fungi from various

localities. (Prov. of the Acad. of Nat. Sc. of Philadelphia 1895.

p. 413.)

Fomes alboluteus, Grandinia fuscolutea, Peniophora trachytricha, Bovista

cellulosae, Lycoperdon alpigenum, Capnodium Lygodesmiae, Acanthostigma

scopulorum, Herpotrichia purpurea, Letendraea luteola, Rosellinia geasteroides,

R. limoniispora, R. muriculata, Melanopsamma borealis, Melanomma boreale,

M. nigricans, M. subcongruum, Ceratostoma melaspermum. Ceratostoma alboma-

culans, Amphisphaeria confertissima, A. pilosella, Teichospora nitida, T. minima,

Lophiostoma clavisporum, L. dakotense, Cucurbitaria stenocarpa, Spaerella

Nicotianae, S. vagans, Physalospora Corni, Didymella Rieini, Didymosphaeria

Celtidis, Pleospora coloradensis, P. juncicola, Leptosphaeria lethalis, L. concinna,

Metasphaeria quercina, Ophiobolus Helianthi, O. purpureus, Thyridium pallidum,

Anthostomella albocincta, Valsa leucopsis, Eutypella alpina, E. herbicola, Diatry-

pella Fraxini, Melogramma boreale, Hypoxylon californicum, Phyllachora Planta-

ginis, Dothidella longissima (Pers.) Ell. et Ev., Homostegia coscinodisca, Ciboria

Liquidambaris, Mollisia Asclepiadis, Cenangium conglobatum, Chlorosplenium

striisporum EII, et Dearn., Cenangella abietina, Patellea hysterioides, Duplicaria

acuminata, Phyllosticha amieta, P. Trillii, P. Rudbeckiae, P. solitaris, P. castani-

cola, Asteroma infuscans, A. Parkinsoniae, Aposphaeria ohiensis, Dothiorella

fraxinicola, D. Crataegi, Fusicoccum quercinum, Diplodia celastrina, D. Umbellu-

lariae, D. officinalis, Botryodiplodia ostiolata. Ascochyta zeicola, Diplodina

coloradensis, Septoria variegata, S. Asplenii, S. curvispora, Amerosporium

cinctum, Phleospora californica, Glocosporium castanicolum , Cylindrosporium

Rhamni, Marsonia Rhamni, M. rubiginosa, Melanconium crinigerum, M. Alni

Cooke et EI. (= Sphaeropsis A.), Ovularia lotophaga, Ramularia circumfusa,

R. cercosporoides, Cercosporella Baccharidis, C. nivea, Cercospora hibiscina,

C. stomatica, C, Grindeliae, Cladosporium aromaticum, Macrosporium toruloides,

Sporidesmium punctans, Brachysporium pedunculatum, Macrosporium cucu-

merinum, Stemphylium laxum, S. subradians, Stilbomyces Berenice (n. g.

Stilbearum), Fusarium acuminatum.

Farlow, W. ©. Mimicry of fungi in insects. (The Botan. Gaz.

1895. p. 546.)

Verf. berichtet von einer Kallimaart, deren Flügel Blätter nachahmen, die

mit Flecken von Strigula oder Meliola bedeckt sind.

Gibson, W. H. Our edible toadstools and mushrooms, and how to

distinguish them etc. New York (Harper) 1895. Pr. 7,50 Doll.

| Harlay, A. et Harlay, V. Note concernant la rdapparition des cham-

| pignons apres la periode de secheresse de l’annde 1895, (Bull.

de la Soc. Myc. de France 1895. p. 244.)

Hennings, P. Fungi camerunenses I. (Engl. Jahrb. XXII. 1895. p. 72.)

Das Material zu dieser Arbeit wurde zum grössten Theil von Dusen in

Kamerun gesammelt. Ferner sind noch eine Anzahl von Nummern, die von

| deutschen Sammlern herrühren, berücksichtigt worden. Neu sind folgende Arten:

Helotium aurantiacum, H. camerunense, H. spathicola, Lachnea Jungneri, Terfezia

Pfeilii, Nectria Turraeae, N. Jungneri, Corallomyces elegans B. et Br. var.

camerunensis, Epichlo@ Oplismeni, Balansia Jungneri, Sordaria elephantina,

Gibbera camerunensis, Rosellinia elaeicola, Hypoxylon Eriodendri, Xylaria

(13)

verruculosa, X. nutans, Phyllachora graminis (Pers.) Fuck. var. panicicola, Pseudo-

graphis Volkensii, Septoria coffeicola, Diplodia cocaicola, Leptothyrium minimum,

Coryneum camerunense, Stilbum camerunense, Fusarium camerunense, F. Nectriae

Turraeae, F. coffeicola, Ravenelia Stuhlmanni, Cronartium Gilgianum, Tremella

setulosa, Guepinia camerunensis, Stereum Sprucei Berk. var. cinereum, Cyphella

poriformis. C. rufo -brunnea, C. disciformis, Pistillaria Penniseti, Lachnocladium

Dusenii, L. quangense, L. strictum, Hydnum Duseni, Poria Dusenii, Fomes

minutulus, F. ferreus Berk. f. cinereus, Polyporus aureo-marginatus, P. evanido-

squamulosus (= P. squamulosus P. Henn. non Bresad.), Polystictus aratus Berk.

var. griseo-brunneus, P. ekunduensis, P. subflabellum, P. atro-albus, Trametes

Ellisiana, Favolaschia lateritia, F. bibundensis, F. Friesiana, Lentinus crateriformis,

Panus papillatus, Campanella Büttneri (n. gen.), Arrhenia cupuliformis, Ma-

rasimus Cyathula, M. discoideus, M. citrinus, M. alliacioides, M. Staudtii mit

var, pallidus, M. rhodocephalus, Fr. var. major, M. subrhodocephalus, M. roseolus,

M. atroalbus, M. Zenkeri, M. Hungo, M. Ililacino-striatus, M. favoloides, M.

rufobrunneus, M. barombiensis, M. minutulus, M. Friesianus, M. conico -papi-

llatus, M. Dusenii, M. paradoxus, M. discipes, M. palmicola mit var. griseus,

Crepidotus togoensis, Flammula subsapinea, Claudopus camerunensis, Clitopilus

togoensis, Eceilia camerunensis, E. Zenkeri, Leptonia viridula, Pleurotus submitis,

Omphalia ndianensis, O. subintegrella, O. Staudtii, Mycena gypsea Fr. var.

camerunensis, Collybia arborescens, C. Zenkeri, Armillaria mellea Vahl var,

camerunensis, Lepiota camerunensis, L. aureo-violacea, Clathrus camerunensis

P. Henn. var. Preussii, Kalchbrennera Tuckii (Kalchbr. et Mac Ow.) var.

clathroides, Floccomutinus Zenkeri (nov. gen.), Scleroderma pisiforme.

Hennings, P. Fungi somalenses, in expeditione Ruspoliana a doct.

D. Riva lecti. (Ann. del R. Istit. Bot. diRoma VI. fasc. 2. 1896. p. 84.)

Unter den wenigen aulgezählten.-Arten sind mehrere neu.

Istvanffy, G. v. Ueber die Rolle der Zellkerne bei der Entwickelung

der Pilze. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895. p. 452.) c. tab. 3.

Verf. führt eine grosse Zahl von Beobachtungen an Kernen auf, die er bei

Pilzen aus den verschiedensten Abtheilungen gemacht hat. Die einzelnen Arten

zu beschreiben, würde zu weit führen; die meisten sind durch Figuren erläutert,

Aus den allgemeinen Resultaten sei Folgendes hervorgehoben: Der Zellkern

spielt in der Entwicklung der Pilze eine hervorragende Rolle, namentlich bei

Verzweigungen, die stets in der Nähe des Kerns angelegt werden. Bei der

Zygosporenbildung der Mucorineen findet eine Verschmelzung der Kerne nicht

statt, ebensowenig bei der Schnallenbildung. Infolge der raschen Vermehrung

der Kerne kommt bei allen Eumyceten vorübergehend eine Periode der Viel-

kernigkeit vor. Die Wanderung der Kerne kann bei den meisten Fruchtbildungen

constatirt werden. Bei ein und derselben Art sind die Kerne, je nach den

morphologischen Partien, in denen sie vorkommen, von verschiedener Grösse,

Die Kerne vermehren sich durch Zweitheilung entweder direct oder mit karyo-

kinetischen Figuren; ausnahmsweise findet auch eine Zerklüftung in mehrere

Partieen statt.

Marchal, EE Champignons coprophiles de Belgique. (Bull. de la Soc.

roy. de bot. de Belgique XXXIV. 1895. p. 125.) c. tab. 2 et fig.

Verf., der sich seit längerer Zeit mit dem Studium der mistbewohnenden

Pilze Belgiens befasst, giebt hier einen neuen, interessanten Beitrag zum Studium

dieser Pilze, Ausser einigen neu aufgefundenen Arten beschreibt er folgende

neue: Eurotium semiimmersum, Humaria leporum Fuck. var. macrospora,

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(14)

Boudierella Sacc. nov. gen. mit der Art. B. nana March., Ascobolus glaber

Pers. var. albidus, Trichia varia Pers. var. fimicola, Cephalosporium asperum,

C. oxysporum, Gliocladium macropodinum, Acremoniella atra Sacc, var. fimiseda,

Botrytis fulgens, Echinobotryum pulvinatum, Stachybotrys crassa, Periconia

scyphophora, P. felina, Trichosporium inflatum, Coremium glaucum Fr. var. fimi-

colum, Graphium stercorarium, Lachnodochnium candidum (nov. gen. aff.

Cephalodochium).

Mer, EE Une nouvelle maladie des feuilles de Melöze. (Compt. rend.

CXXI. 1895. n. 25. 16 Dez. p. 964.)

Miyoshi, M. Anwendung japanischer Soja und deren Gemische für

Pilzeultur. (The Tokyo Bot. Magaz. 1895. p. 361.) Japan. mit

deutsch. Res,

Einige Pilze wachsen in 10—20 %, Sojalösung gut, trotzdem aber bietet

Soja keinen besonders guten Nährboden, weil wenig Kohlehydrate darin ent-

halten sind und der Gehalt an Kochsalz sehr hoch ist,

Pammel, L. H. Discases of plants at Ames 1894. (Proc. Jowa Acad.

of Sci. 1894. Des Moines 1895. p. 201.)

Verf. führt eine grosse Zahl von Pilzen auf, die er als Urheber von Pflanzen-

krankheiten im Jahre 1894 beobachtet hat,

Patouillard, N. et Lagerheim, 6. de. Champignons de l’Equateur V.

(Bull. de la Soc. Myc. de France 1895. p. 205.)

Neu sind Omphalia pichinchensis, O. nigripes, Polyporus pseudoradiatus,

P. Sancti-Georgii, Poria tephra, Trametes andina, Grandinia granulosa (Pers.)

var, Chusqueae, Cyphella globosa, C. Erica, Ditangium minutum, Guepiniopsis

agaricinus, G. andinus, Chondrioderma quitense, Uromyces Verneriae Lagh.,

U. Bidentis Lagh., U. andinus Lagh., U. quitensis Lagh., Puccinia Mutisiae Lagh,,

P. horrida Lagh., P. Pitcairniae Lagh., P. Chaetogastrae Lagh., Uredo Bomareae

Lagh., U. Cherimoniae Lagh., U. Eucharidis Lagh., U. Lentis Lagh., Aleuria qui-

tensis, Niptera Lagerheimi, Belonidium Chusqueae, D. microscopicum, B. andinum,

Erinella viridula, Orbilia andina, Karschia (?) fulvodisca, Phaeopezia splendens,

Cenangium australe, C. biparasiticum, Scleroderris coerulea, Stictis corticioides,

S. rubiacearum, Schizoxylon andinum, Asterina crustosa Cke. var, microspora,

A.calotheca, Parodiella dothideoides, Meliola acanthopoda, Capnodium melioloides,

C. Coffeae Pat. var. Melastomatis, C. crassum, Hypoxylon bambusicolum Speg.

var. Chusqueae, Kretschmaria sessilis, Rosellinia Chusqueae, Leptosphaeria

stellata, Amphisphaeria rhodella, Acanthostigma Chusqueae, Sordaria clavata,

Gaillardiella pezizoides nov. gen. (nach Verf. Zwischenform zwischen Nectrieen

und Perisporieen), Nectria alba, N. pertusa, N, subinsularis, Valsonectria andina,

Hypocrea (?) Euphorbiae, Calonectria verrucosa, Broomella Lagerheimi, Cordyceps

Cusu, Phyllachora nidulans Pat. var. Senecionis, Seynesia rimosa, S. disciformis,

Ascomycetella quitensis, Heterochlamys Chusqueae (nov. gen. inter Micro-

peltidem et Polystomellam), Capnodiastrum andinum, Septoria Phytolaccae, S.

Mominae, Cercospora Jochromatis, C. Piperis, Trichosporium gossypinum, Hetero-

sporium Allii EIl. var. Bomareae, Fusidium violaccum, Fusarium Jungiae, Stilbum

Euphorbiae, S. Rimbachii. Wenn nicht anders bemerkt, so ist Patouillard Autor.

Peck, Ch. H. New Species of Fungi. (Bull. Torr. Bot. Cl. 1895. p. 485).

Amanitopsis velosa, Tricholoma semivestitutum, Collybia microscopica, My-

cena caesia, Ilygrophorus sphaerosporus, Marasmius subtomentosus, M, badius,

(15)

Volvaria striatula, Pluteus stercorarius, Inocybe radiata, Flammula decurrens,

Crepidotus cinnabarinus, Stropharia caesifolia, Hypholoma cutifracta, Psathyrella

leucostigma, P. Bartholomaei, Coprinus ebulbosus, C. laniger, Thelephora sub-

undulata, Secotium decipiens, Macrosporium Amaranthi, M. Clematidis, Hey-

denia fungicola.

Ritzema, Bos J. Kurze Mittheilungen über Pflanzenkrankheiten und

Beschädigungen in den Niederlanden im Jahre 1894. (Zeitschr. f.

Pflanzenkr. 1895. p. 286.)

Tassi, Fl. Micologia della provincia senese I. (Nuov. Giorn. Bot.

Ital. 1896. p. 22.)

Verf. zählt 131 in der Provinz gefundene Arten mit Standorten auf. Die

Arten sind aus allen Abtheilungen des Pilzreiches.

Voglino, P. Prima contribuzione allo studio della flora micologica

del canton Ticino. (Bull. della Soc. Bot. Ital. 1896. p. 34.) N. A.

Vuillemin, P. Sur une maladie du Prunellier contractee spontane-

ment par un Erable. (Compt. rend. CXXI. 1895. n. 21. 18 nov.)

Wehmer, C. Ueber die Verflüssigung der Gelatine durch Pilze.

(Chemikerzeit. XIX. 1895. n. 91.)

Atkinson, G. F. On the swarm spores of Pythium and Ceratiomyxa.

(Proc. of the Americ. Assoc. f. the Advanc. of Sc. 43. Meet. held

at Brooklyn. 1894. Salem 1895. p. 290.) Referat.

Dangeard, P. A. Memoire sur les parasites, du noyau et du proto-

plasma. (Le Botaniste 4 ser. 6 fasc. 1896. p. 199.) c. fig.

Im ersten Theil der Arbeiten schildert Dangeard die Entwickelung eines

Parasiten im Kern von Amoeben. Er beschreibt zuerst das Aussehen des nor-

malen Kernes und dann die Veränderungen, welche in ihm durch die Anwesen-

heit eines Parasiten vor sich gehen. Zuerst als kleiner Punkt erscheinend,

wächst der Parasit im Kern zu grösserem Umfang heran, indem er die Kern-

substanz aufzehrt, aber innerhalb der Kernmembran bleibt. Der Inhalt theilt

sich dann in einzelne Partieen, von denen jede zu einem Schwärmer wird.

Das Ausschwärmen hat Verf. nicht beobachtet, er schliesst es nur aus der Art

der Infection. Der neue Organismus erhält den Namen Nucleophaga {n. g.)

Amoebae. Was seine systematische Stellung betrifft, so glaubt Verf., dass er

am besten in die Nähe von Sphaerita zu den Chytridiaceen zu stellen sei.

Verf. führt dann weiter aus, dass der Organismus von früheren Forschern

bereits gesehen, aber falsch gedeutet sei. Man glaubte es früher mit Geschlechts-

organen bei den Rhizopoden zu thun zu haben. Auch die Kernverhältnisse der

Rhizopoden sind durch die Anwesenheit der Nucleophaga mehrfach falsch ge-

deutet worden. Verf. führt diesen Punkt an der Hand der Literatur weiter aus.

Verf. hofft von seiner Entdeckung mannigfache Rückwirkungen auf das Studium

der niederen Organismen und der thierischen Zelle überhaupt.

Im 2. Theil der Arbeit bringt Verf. einige andere Organismen, welche im

Plasma von Euglena parasitisch leben. Die von ihm bereits früher beschriebene

Sphaerita endogena kcnnte er noch einmal auf ihren Entwickelungsgang prüfen

und mehrfach Ergänzungen zu seinen früheren Angaben machen. Ein zweiter

ae aldi m Ab. ande Zu Ba na

(16)

interessanter Pilz in Englena ist Olpidium Euglenae n. sp. Der Parasit wächst

in Form kugliger Zellen im Innern des Plasmas und bildet durch Theilung seines

Inhalts Schwärmsporen aus. Die Sporangienwand stülpt sich aus der Euglena

hervor und entlässt die Schwärmsporen. Dieser Organismus ist nur selten zu

finden und unterscheidet sich von den 3 anderen parasitischen Chytridiaceen

auf Euglena wesentlich durch seine Entwicklung.

Dangeard, P. A. Considerations sur les phenomenes de reproduction

chez les Phycomycetes. (Le Botaniste 4 ser. 6 fasc. 1896. p. 249.)

Dangeard vergleicht die Resultate seiner Untersuchungen mit denen anderer

Forscher und hebt die Differenzpunkte eingehend hervor. Da die Streitfrage

der Kerntheilungen und Verschmelzungen bei den Phycomyceten noch nicht

überall klar gelegt ist, so soll auf die Auseinandersetzungen des Verf. vorläufig

nicht weiter eingegangen werden.

De Wildeman, E. Quelques Chytridiacdes nouvelles parasites d’Algues.

(La Notarisia 1895. p. 33.)

Beschrieben werden Olpidiopsis Zopfii, O. fibrillosa, O. appendiculata, Rhi-

zidium Chaetophorae, Olpidium rostratum.

Peglion, V. Sopra i Trattamenti antiperonosporici. (Rivist. di Patol.

Veget. IV. 1895. p. 67.)

Thaxter, R. New or peculiar aquatic fungi II. (The Botan. Gaz.

1895. p. 477.) c. tab.

Verf. setzt seine Untersuchungen über die interessante Gruppe der Mono-

blepharidaceen fort. Von der Gattung Gonapodya beschreibt er die neue, an

faulenden Pflanzentheilen im Wasser lebende G. polymorpha und theilt zugleich

Beobachtungen über die einzige bisher bekannte Art, G. siliquiformis, mit, —

Ein höchst bemerkenswerther Pilz ist Myrioblepharis paradoxa n. g. et n.

sp., ausgezeichnet dadurch, dass die Sporangien immer wieder durchwachsen

werden, so dass schliesslich reihenweise in einander steckende Sporangiumhüllen

entstehen. Die Zoosporen sind schr gross und nur zu wenigen im Sporangium

und auf ihrer ganzen Oberfläche mit feinen Cilien bedeckt. Die sexuelle Fort-

pflanzung ist noch unbekannt.

— New or peculiar American Zygomycetes I. (The Botan. Gaz.

1895. p. 513.) c. tab.

Beschrieben wird die neue Art Dispira americana auf Rattenkoth. Die

Abbildungen geben die Entwicklung der Zygosporen des interessanten Pilzes.

Fautrey, F. Une nouvelle maladie du Solanum tuberosum, Entorr-

hiza Solani. (Rev. mycol. 1896. p. 11.)

Die Pflanzen werden welk, bekommen gelbe Blätter und faulen schliesslich

am Wurzelhals. Blüthen und Knollen werden nicht gebildet. Als Ursache der

Krankheit giebt Verf. den neuen Pilz Entorrhiza Solani an, dessen Diagnose er

mittheilt.

Magnus, P. Ueber die Ustilagineengattung Setchellia P. Magn.

(Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895. p. 468.) c. tab.

Verf, geht näher auf den Bau und auf die Keimung der Sporen von Set-

chellia punctiformis (Doassansia) ein. Die intercellular entstehenden Sporen-

(17)

lager sind nicht, wie bei den anderen Doassansien, allseitig berindet, sondern

an der Aussenseite ohne Rindenschicht, die an den ührigen Theilen des Haufens

als ein- bis mehrfache Lage brauner, den Sporen ähnlich sehender Zellen vor-

handen ist. Die Keimung der Sporen erfolgte ohne Ruheperiode, während

Brefeld die Auskeimung erst nach längerem Liegen erzielte.

Morot, L. Note sur un Doassansia nouveau. (Journ. de Botan. 1895.

P- 469.)

Doassansia intermedia auf den Blättern von Alisma ranunculoides bei

Cholet (Maine -et-Loire).

Saccardo, P. A. e Mattirolo, 0. Contribuzione allo studio dell’ Oedo-

myces leproides Sacc. (Malpighia 1895. p. 459.) c. tab.

Die Verff. untersuchen die von Trabut entdeckte Krankheit der Zucker-

rüben genauer, um die Verwandtschaft des Pilzes sicherzustellen. Das Mycel

wächst intercellular und bildet im Verlauf oder am Ende der Fäden die Sporen

aus. Wie Saccardo bereits früher angegeben hat, gehört demnach der Pilz zu

den Ustilagineen, wo er in die Verwandtschaft von Entyloma zu stellen ist.

Trabut. Sur une Ustilaginde parasite de la Betterave „Oedomyces

leproides“. (Rev. mycol. 1895. p. 10.) c. tab.

Nur Referat einer früheren Arbeit des Verf. in der Rev. gener. de Bot. 1894.

Bourquelot, E. et Herissey, H. Les ferments solubles du Polyporus

sulfureus (Bull). (Bull. de la Soc. Myc. de France 1895. p. 235.)

Die Verff, wiesen an Fermenten im Polyporus sulfureus nach: Invertin,

Maltase, Trehalase, Emulsin, Inulase, Diastase, Lactase und Fiweissfermente.

Brunaud, P. Supplement A la liste des Hymenomycetes recoltes dans

la Charente-inferieure. (Act. de la Soc. Linn. de Bordeaux 5. ser.

t. VI. 1893. p. 341.)

Die Liste umfasst Formen aus allen Familien der Hymenomyceten.

Dietel, P. Ochropsora, eine neue Uredineengattung. (Ber. d. Deutsch.

Bot. Ges. 1895. p. 401.)

Bei der Untersuchung von Melampsora Sorbi fand Verf., dass die ursprüng-

lich einzelligen Sporen sich in 3—4 übereinanderstehende Zellen theilen, deren

jede eine Sterigma mit Conidie erzeugt. Da der Pilz hierdurch von Melampsora

sehr abweicht, schlägt Dietel ihn als Vertreter einer neuen Gattung Ochrop-

sora vor.

Eriksson, J. Ein parasitischer Pilz als Index der inneren Natur eines

. Pflanzenbastardes. (Botan. Notiser 1895. p. 251.)

Auf einer Bastardform zwischen Weizen und Roggen fand sich Puccinia

dispersa. Da dieser Pilz 2 Formen bildet, von denen die eine an Weizen, die

andere an Roggen angepasst ist, so fragte sich, welche Form auf dem Bastard

zu finden sei. Impfversuche ergaben das Vorhandensein der f. Tritici. Der

Bastard selbst näherte sich in seinem Aussehen mehr dem Weizen als dem

Roggen.

Hedwigia Bad, XXXV, 1896.

D&D

;

(18)

Fischer, E. Contributions & l’etude du genre Coleosporium. (Bull.

de la Soc. Bot. de France 1894. Sess. extraord. en Suisse 2, part.

1895. p. CLXVIIL.)

Verf. giebt einen Ueberblick über die Untersuchungen, welche von ihm

und anderen Forschern über die Zusammengehörigkeit von Coleosporium mit

Peridermiumarten angestellt sind. Die hauptsächlichsten Unterschiede dieser

sehr nahe verwandten Species liegen in den Teleutosporen und in der Ver-

schiedenheit der Wirthspflanze derselben. Die zusammengehörigen Fructifications-

formen seien hier nebeneinander gestellt:

Coleosporium Inulae Kze. und Peridermium Klebahnii E. Fisch.

— Sonchi-arvensis (Pers.) » — Fischeri Kleb.

— Senecionis (Pers.) » — oblongisporium Fuck.

— Cacaliae (DC.) » — Magnusianum E, Fisch. nov. nom.

— Petasitis (De By.) » — Boudieri E. Fisch. nov. nom.

— Tussilaginis (Pers.) » — Plowrightii Kleb.

— Campanulae (Pers.) » — Rostrupi E. Fisch. nov. nom.

— Euphrasiae auf Alectorolophus

major „ — Stahlii Kleb.

— — auf Melampyrum »„ — Soraueri Kleb.

Harlay, V. Sur un cas d’empoisonnement par l’Amanita pantherina.

(Bull. de la Soc. Myc. de France 1895. p. 240.)

Istvanffi, G. de. Nouvelles recherches sur les organes conducteurs

des Hydnes, Thelephores et Tomentelles. (Rev. mycol. 1896. p. 1.)

c. tab.

Verf. theilt die Resultate seiner Untersuchungen über das Leitungssystem

bei den niederen Basidiomyceten mit. Es konnten je nach der Form, der Lage

u.s. w. der leitenden Organe mehrere Gruppen unterschieden werden. 1. Leitende

Zellen röhrig und geschlängelt, über das Hymenium vorragend (z. B. Hymeno-

chaete- Arten; Corticium murinum Berk. et Br. = Hymenoch. m. Istv.). 2. Lei-

tende Zellen röhrig, nicht in's Hymenium eindringend (Hypochnus laxus Istv. —

Hymenoch. |. Karst., Radulum orbiculare). 3. Leitende Zellen röhrig, zuerst der

Oberfläche des Hymeniums parallel laufend und am Ende mehr weniger keulig

(Stereum-Arten). 4. Leitende Zellen röhrig, senkrecht zur Oberfläche des

Hymeniums verlaufend und in mehreren Lagen liegend (Thelephora - Arten).

5. Wie vorige, aber keulig (Corticium - Arten). 6. Leitende Zellen kuglig

(Hypochnus-Arten, Grandinia crustosa)

Verf. beschreibt bei den einzelnen Abtheilungen die anatomischen Befunde

genauer und bildet eine Zahl von Einzelheiten auf der Tafel ab. Auf die weiteren

Schlussfolgerungen am Ende der Arbeit sei hier noch hingewiesen.

Patouillard, N. Variations du sclerote de Lentinus Woermanni Cohn

et Schroet. (Bull. de la Soc. Myc. de France 1895. p. 247.) c. tab.

Rauch, F. Beitrag zur Keimung der Uredineen- und Erysipheen-

Sporen in verschiedenen Nährmedien. Diss. Göttingen 1895.

Wehmer, C. Notiz über die Unempfindlichkeit der Hüte des Austern-

pilzes gegen Erfrieren. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895. p. 473.)

Verf. theilt mit, dass hart gefrorene Hüte von Agaricus ostreatus nach dem

allmählichen Aufthauen normal Sporen warfen, dass also die Einwirkung der

Kälte die Lebensthätigkeit des Pilzes in keiner Weise behindert hatte.

|———

Yasuda, A. Hirneola and Exidia. (The Tokyo Botan. Magaz. 1895.

p. 371.) c. fig. Japan.

Chatin, A. Truffe (Terfezia Hanotauxii n. sp.) de Teheran. (Compt.

rend. CXXI. 1895 n. 21. 18 nov.)

Ellis, J. B. Notes on some specimens of Pyrenomycetes in the

Schweinitz Herbarium of the Academy. (Proc. of the Acad. of

Nat. Sc. of Philadelphia 1895. 21. Febr.)

Verf, untersucht eine Anzahl Originalexemplare von Schweinitz und bringt

die meist unter Sphaeria beschriebenen Arten in heutige Gattungen unter, An-

geführt seien: Lasiosphaeria setosa (Sphaeria setosa Schweinitz), L. emergens

(Sphaeria), Chaetosphaeria squamulata EI. et Ev. (= Sph. aquamata Schw.),

Melanomma exile (Sph.), Rosellinia rhodomela, R. imposita, Ceratostomella in-

vestita, Amphisphaeria papilla, Trematosphaeria confertula, T. Schweinitzii EI.

et Ev. n. sp., Amphispaeria mobilis, Lophiostoma tingens, L. Spiracae, Calo-

sphaeria assecla, Pseudovalsa occulta, Diatrypella obscurata, Phoma pyrina, P.,

tageticola, Vermicularia Cacti, Sphaeropsis Taxi, S. Schweinitzii EIl. et Ev.

(= Sph. caulium Schwein.), Sphaeropsis Ruborum, S. pericarpii, Discosia pla-

centula.. Am Schluss führt Verf. noch eine Reihe zweifelhafter, sowie wegen

des Erhaltungszustandes überhaupt nicht auszumachender Sphaeria-Arten von

Schweinitz an.

Galloway, B. T. ÖObservations on the development of Uncinula spi-

ralis. (The Botan. Gaz. 1895. p. 486.) c. tab. 2.

Verf. theilt Beobachtungen über die Lebens- und Entwickelungsgeschichte

des dem Wein gefährlichen Pilzes mit. Davon sind namentlich bemerkenswerth

diejenigen über das Aufspringen der Perithecien und die Keimung der Sporen.

Giesenhagen, K. Die Entwickelungsreihen der parasitischen Exoasceen.

(Flora LXXXI. 1895. p. 267.) c. fig.

Die bisher erschienenen Arbeiten über die Gruppe der Exoasceen weisen

so bedeutende Verschiedenheiten in der Abgrenzung der Genera und der An-

ordnung der Arten auf, dass Verf. versucht, eine neue Eintheilung der Gruppe

auf natürlicherer Grundlage zu geben. Vorausgeschickt mag gleich die Bemcr-

kung sein, dass es mit phylogenetischen Speculationen, wie sie Verf. anstellt,

seine eigene Bewandtniss hat; das, was schliesslich resultirt, beruht ja nur auf

subjectiver Aufiassung, etwas absolut Gewisses lässt sich nun einmal vorläufig nicht

für die Abstammung und Verwandtschaft der Formen ermitteln. Indessen bleibt

der Versuch der Eintheilung, wie er hier gegeben ist, bemerkenswerth, zumal

er hier in Bezug auf eine grössere Zahl von Formen consequent durchgeführt ist.

Verf. hebt aus der Zahl der Arten diejenigen der Gattung Magnusiella

heraus, belässt aber in der Gattung, wie sie Sadebeck definirt hat, nur M. Gi-

thaginis und M. Umbellifarerum. Alle übrigen Arten stellt er in eine Gattung

Taphrina zusammen. Die Gründe, welche er für die Zusammenziehung der

Gattungen Exoascus und Taphrina (Taphria) anführt, sollen "hier nicht weiter

erörtert werden, da die Entscheidung, wie die Abgrenzung von Gattungen zu

wählen sind, immer hauptsächlich vom systematischen Gefühl des Bearbeiters

abhängig ist.

Für die weitere Theilung der Gattung geht Verf. davon aus, dass er die

Organisation derjenigen Arten näher betrachtet, welche auf verwandten Pha-

Be Ze 3 ih En 0 ld nn HEE zunı Hal 0 a7 u Kae Bd er ..: ;

(20)

nerogamen-Gattungen oder -Gruppen vorkommen. Hier unterscheidet er 4 Typen.

1. Der Filicina-Typus. Ilier kommen schlanke Schläuche vor, die an beiden

Enden verschmälert und abgerundet sind. 2. Der Betulae-Typus mit plump

eylindrischen Schläuchen, die am oberen Ende flach abgerundet, gestutzt oder

schwach eingebogen, am unteren gerade oder abgerundet sind. 3. Der Pruni-

Typus mit keulenförmigen bis schlank cylindrischen, oben flach abgerundeten

oder stumpfen Schläuchen. Endlich 4. der Magnusiella-Typus mit grossen, sack-

artigen, ovalen, fast kugligen Schläuchen. Dieser letztere Typus ist auf Mag-

nusiella beschränkt. — Jeder dieser Typen ist auf cine bestimmte Gruppe von

Nährptlanzen beschränkt. Typ. I auf Farnen, Typ. II auf Cupuliferen, Betula-

ceen, Salicaceen, Hippocastanaccen und Aceraceen, Typ. II auf Rosaceen. Es

ist nicht zu leugnen, dass die Uebereinstimmung der Askenform mit dem Vor-

kommen auf gewissen Phanerogamen sehr auffällig ist. In den einzelnen Typen

sind nun Arten vorhanden, welche nach den Definitionen von Sadebeck,

Schroeter und Brefeld entweder zu Exoascus oder Taphrina zu stellen wären.

Auf die einzelnen Punkte, wie das Vorhandensein von sterilen Zellen neben den

Schläuchen, von Stielzellen, ferner auf die Bedeutung des Perennirens des

Mycel geht Verf. genau ein. Es würde aber zu weit führen, ihm hier in seinem

Gedankengang zu folgen. Hervorgehoben sei nur, dass er das Vorhandensein

einer Stielzelle nicht für wichtig genug zur Gattungsabgrenzung hält, indem er

die Uebergänge zwischen beiden Formausbildungen ganz besonders betont.

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ee Be BE A

Ganz allgemein spricht Verf. das Resultat seiner Untersuchung so aus:

Die auf verwandten Nährpflanzen lebenden Exoasceen erweisen sich durch die

Uebereinstimmung der Askenform als stammesverwandte Arten.

Was über die geographische Verbreitung der Arten und Gruppen gesagt

wird, kann hier ebenfalls nicht weiter berührt werden. Vortheilhaft für den Ge-

brauch sind die skizzenhaften Bilder, welche Verf, von fast allen bekannten

Arten giebt.

Um noch eine Vorstellung der näheren Eintheilung zu geben, seien die

Arten angeführt.

A. Der Filicina-Stamm. T. cornu cervi, filicina, Laurencia, fasciculata,

lutescens,

B. Der Betulae-Stamm. a) Auf Ulmaceen. T. Ulmi, Celtis; b) auf Betula-

ceen «) auf Betula, T. alpina, nana, Betulae, betulina, carnea, bacteriosperima,

Nava, turgida, ) auf Alnus. T. epiphylla, Sadebeckii, Robinsoniana, Tosquinetii,

Alni incanae; c) auf Cupuliferen. T. Ostryae, virginica, Carpini, australis, Kruchii,

} coerulescens; d) auf Salicaceen. T. aurca, Johansonii, rhizophora.

C. Der Pruni-Stamm. a) Auf Pomeen. T.Crataegi, bullata; b) auf Pruneen.

” T. deformans, minor, insititiae, decipiens, Cerasi, Tremi, mirabilis, Farlowii, con-

| fusa, Rostrupiana, communis, longipes, rhizipes; c) auf Potentilleen. T. Potentillae.

D. Der Aesculi-Stamm. a) Auf Hippocastanaceen. T. Aesculi; b) auf

Anacardiaceen,. T. purpurascens; c) auf Aceraceen. T. acericola, polvspora.

> ln

Harper, R. A. Die Entwickelung des Peritheciums bei Sphaerotheca

Castagnei. (Ber. d Deutsch. Bot. Ges. 1895. p. 475.) c. tab.

Nachdem De Bary bereits die Entwicklung der Perithecien von Sphaerotheca

Castagnei verfolgt hatte, stellt Verf, jetzt das Verhalten der Kerne fest. Die

: Antheridienzelle besitzt nur einen Kern, der durch ein sich bildendes Membran-

loch in das Pollinodium hinüberwandert und mit dem Kern verschmilzt. Dieser

aus zweien verschmolzene Kern theilt sich in 2, von denen jeder in eine durch

Scheidewandbildung abgetrennte Zelle des Pollinods sich befindet. Der Kern

(21)

der oberen Zelle theilt sich abermals. Es werden nun aus der oberen Zelle (die

untere theilt sich nicht weiter) 2 oder mehrere Zellen gebildet, von denen die

vorletzte 2, alle übrigen nur einen Kern enthalten. Aus dieser 2kernigen Zelle

geht der Ascus hervor. Die beiden Kerne vereinigen sich zunächst, um dann

durch weitere Theilungen die Kerne der Sporen zu bilden. Der Vereinigung

der beiden Kerne in der Ascusanlage kommt die Bedeutung eines geschlecht-

lichen Actes nicht zu. Betreff der Entwicklung der Hüllfäden und der späteren

Peritheciumshülle sei auf die Arbeit verwiesen.

Hartig, R. Ueber den Nadelschüttepilz der Lärche, Sphaerella laricina

n. sp. (Sitzb. der k. bayr. Ac. der Wiss. 1895. vol. II.)

Der Nadelschüttepilz der Lärche, Sphaerella laricina n. sp. (Forstl.

Naturw. Zeitschr. 1895. p. 445.) c. fig.

Als Ursache der Nadelschütte der Lärche weist Verf. die neue Sphaerella

laricina nach. An den erkrankten Blättern bilden sich Pykniden; auf den am

Boden liegenden die Perithecien. Der Pilz ist ausserordentlich schädlich und

gefährdet die Bestände sehr. Auch die Resultate einiger Impfversuche theilt

Verf, am Schluss der Arbeit mit.

Jaczewski, A. Les Capnodices de la Suisse. (Bull. de l’Herb. Boiss.

1895. p. 604.)

Bekannt sind aus der Schweiz Capnodium salicinum Mont., C. Filiae Fuck.

u. C. Footii Berk. et Desm.

— Xylarices et Dothideacees de la Suisse. (Bull. de la Soc. Myc.

de France. 1895. p. 248.)

Nur eine alphabetische Liste der Arten mit ihren Synonymen, die bereits

vom Verf. in anderen Publlcationen ausführlich behandelt wurden.

Laborde, J. Sur la consommation du maltose par une moisissure nou-

velle, l’Eurotiopsis Gayoni Cost. (Compt. rend. de la Soc. de

biol. 1895. p. 472.)

Patterson, F. W. Species ot Taphrina parasitic on Populus. (Proc.

of the Americ. Assoc. f. the Advanc. of Sc. 43. Meet. held at

Brooklyn 1894. Salem 1895. p. 243.) Referat.

Saccardo, P. A. e Berlese, A. N. Una nuova malattia del frumento.

(Rivisti di Patol. Veget. IV. 1895. p 56.) c. tab. 2.

An der Basis der Halme von Weizen wurde eine Krankheit beobachtet,

die sich durch Schwärzung der betreffenden Stelle zu erkennen gab. Die

Ursache ist ein Pilz, von dem sowohl Conidien wie Perithecien gefunden wurden.

Sphaeroderma damnosum Sacc. n. sp. besitzt citronenförmige Sporen und braune

Perithecien und sitzt einer fädigen Unterlage auf.

Wehmer, C. Einige weitere Beiträge zum Parasitismus der Nectria

cinnabarina (Tde.) Fr. (Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1895. p. 268.) c. tab.

Verf. berichtet über Erkrankungen der Hainbuche und der Walnuss durch

den Pilz.

ae Ei Ben ud u il un ee aaa ame Br chin

Eu a a 5 ‚Ei . SF Er

;

ne de» ri, Su ee "A re

(22)

Fink, B. Lichens collected by Dr. C. €. Parry in Wisconsin and

Minnesota in 1848. (Proc. of the Jowa Acad. of Sc. II. 1894. p. 137.)

Flagey, C. Flore des lichens de Franche-Comte et de quelques

localites environnantes Ill. (Mem. de la Soc. d’Emulation du

Doubs 6. ser. vol. VII. 1892. Besangon 1893. p. 17.) IV. (l. ce.

vol. VIII. 1893. Bes. 1894. p. 79.)

Aufzählung der Flechten des Gebietes mit ausführlichen Diagnosen, Stand-

ortsbemerkungen u. Ss. w.

Grilli, C. Lichenes in regione picena et finitimis lecti. (Nuov. Giorn,

Bot. Ital. 1896. p. 54 )

Aufzählung der im Gebiet gefundenen Flechten,

"Henriques, J. A. Contribuigio para o estudo da flora cryptogamica

dos Agores (Bolet. da Soc. Broter. Coimbra 1895. p. 97.)

Verf. zählt die von Carreiro auf den Azoren gesammelten Flechten auf,

Angefügt wird eine Aufzählung von Flechten von Lourengo Marques und

Mogambique.

Hue. Lichens d’Aix-les Bains. (Journ. de Botan. 1896. p. 3.) Anfang.

Loesener, Th. Plantae Selerianae II. (Bull. de l’Herb. Boiss. 1895.

p. 609.) c. tab.

3 Flechten aus Mexico genannt.

Malme, 6.0. A. lichenologiska notiser IV, Adjumenta ad Licheno-

graphiam Sueciae meridionalis. (Botan. Notiser 1895. p. 207 )

Neu sind Caloplaca perfida, Lecidea enalliza Nyl. var. subplana. In andere

Gattungen wurden gestellt Bacidia intermissa (Nyl.) Malme und Buellia coniopta

(Nyl.) Malme.

Müller, J. I.ecanoreae et Lecideeae australienses novae. (Bull. de

'Herb. Boiss. 1895. p. 632.)

Lecanora atra Ach. var. serialis, L. subfusca Ach. var, conjungens, L,

albellaria, L. subumbrina, L. melacarpella, L. Knightiana, L. lavido-fusca,

Lecania chlaronoides, L. solenospora J. Müll. var. leprosa, L. subsquamosa,

Callopisma cerinum Massal. var. microcarpum, Rinodina diffractella, Pertusaria

rhodotropa, P. plicatula, P. elliptica, P. leucostoma, P. leiocarpella, P. subrigida,

P. leucoxantha, P. schizostomella, P. leucothelia, P. microspora, P. amblyogona,

P. irregularis, P. straminea, P. confluens, P. albinea, P. paratropa, P. macra,

P. concava, Lecidca aspidula Krplhb. var. dispersa, L. insulana, L. solenospora,

L. nesophila, L. ferax J. Müll. var. geographica, Blastenia ochroleuca, Buellia

amblyogona, B. macrosporoides.

Nyman, E. En Moriola-liknande laf. (Botan. Notiser 1895. p. 242.)

Schneider, A. Some special Phylogenetic adaptions in Lichens I,

(Bull. Torr Bot. Club 1895. p. 494.)

Verf. betrachtet die Assimilation und das Durchlüftungssystem der Lichenen,

ohne aber dabei neue Gedanken oder Gesichtspunkte zu entwickeln.

BERN... 76

| tin er ee ana. a iann. ı ı Beafa nie re ; u een RE REN 6 DEE 3 Tr ER

(23)

Stizenberger, E. A list of Lichens, collected by Mr. R. Reuleaux in

the Western parts of North America. (Proc. of the Californ. Acad.

2 ser. vol. V. p. 535.)

Aufzählung von 36 Arten, unter denen Alectoria pacifica von der Insel

Guadeloupe im Stillen Ocean neu ist.

Allescher, A. Zwei gefährliche Parasiten der Gattung Codiaeum,

(Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1895. p. 276.)

Gloeosporium Sorauerianum und Asteroma Codiaei.

Benecke. Die zur Ernährung der Schimmelpilze nothwendigen Metalle.

(Pringsh. Jahrb. XXVIII. 1895. p. 487.)

Berlese, A. N. Prima contribuzione allo studio della morfologia €

biologia di Cladosporium e Dematium. (Rivist. di Patol. Veget.

IV. 1895. p. 2.) c. tab. 6.

Vergl. dazu denselben Artikel im Bull. de la Soc. mycol. de France 1895. Heft 1.

Fischer, E. und Lindner, P. Ueber die Enzyme von Schizo-Saccharo-

myces octosporus und Saccharomyces Marxianus. (Ber. d. D.

Chem. Ges. 1895. XXVII. p. 984.)

Der erstere Pilz, welcher zwar Maltose, nicht aber Rohrzucker vergährt,

bildete, wie zu erwarten war, kein Invertin, sondern Glukase. Sacch. Marxianus

verhält sich genau umgekehrt, indem er Rohrzucker, aber nicht Maltose ver-

gährt; deshalb wird auch hier Invertin gebildet.

Halsted, B. D. Notes upon Chalara paradoxa. (Proc. of the Americ.

Assoc. f. the Advanc. of Sc. 43. Meet. held at Brooklyn 1894.

Salem 1895. p. 293.) Referat.

—— Notes upon a root rot of beets (l. c.). Referat.

Hansen, E. Chr. Experimental studies on the variation of Yeast-

cells. (Annals of Bot. XXXVI. 1895. p. 549.)

In der kurzen Mittheilung giebt Verf. eine Uebersicht über seine Arbeiten

und die Anderer betreffs des Einflusses, welchen die Art der Cultur und die

Zusammensetzung der Nährmedien in Bezug auf die Formvariation und das

physiologische Verhalten der Hefezellen ausüben. Er beschreibt für einzelne

Arten die Variationen, die auftreten können. Besonders weist er aber die An-

sichten anderer Untersucher zurück, dass Aspergillus Oryzae unter gewissen

Umständen Hefezellen zu bilden im Stande sei. Bisher ist noch nie der Zu-

sammenhang typischer Gährungshefen mit anderen Pilzen sicher constatirt.

Hebebrand, A. Ueber das Verschimmeln des Brotes. (Arch, f.

Hygiene XXV. 1895. p. 101.)

Hiltner, L. Ueber die durch Ascochyta Pisi hervorgerufene Wurzel-

krankheit der Erbsen. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. I. 1895.

p. 881.)

Verf. weist auf seine älteren Beobachtungen über Ascochyta Pisi im Gegen-

satz zu den in neuerer Zeit von Krüger gemachten hin.

(24)

Klöcker. Recherches sur les Saccharomyces Marxianus, apiculatus,

et anomalus. (Ann. de micogr. 1895. p. 313.)

Klöcker, A. und Schiönning, H. Experimentelle Untersuchungen über

die vermeintliche Umbildung des Aspergillus Oryzae in einen

Saccharomyceten. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. I. 1895 p. 775.)

Die Verff. theilen die Resultate ihrer Culturen mit Aspergillus Oryzae mit,

aus denen hervorgeht, dass die Aspergillusconidien niemals zu Hefe auszusprossen

vermögen. Ebensowenig konnte ein Zusammenhang zwischen Hefe und De-

matium oder Cladosporium nachgewiesen werden. Es scheint also, als ob die

Versuche von Jörgensen und Juhler, welche grade das Gegentheil ergaben, nicht

mit der nöthigen Schärfe angestellt worden sind.

Lesage, P. Recherches experimentales sur la germination des spores

du Penicillum glaucum. (Ann. sc. nat. 8 ser. 1895. 1. p. 308.)

Lindner, P. Ueber eine in Aspidiotus Nerii parasitisch lebende Api-

culatushefe, (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abt. I 1805, p. 782.)

c. fig.

Verf. beobachtete in Schildläusen auf Myrtentöpfen eine kleine beidendig

spitze Hefe, die sich in keiner Nährlösung zu weiterem Wachsthum bringen

liess. Die Inficirung der jungen Individuen findet bereits im Ei statt, wo die

Hefezelle sich mit einer Spitze durch die Eihaut bohrt und im Innern des Eis

eine Tochterzelle abgliedert. Verf. nennt den neuen Parasiten Sacchar. apiculatus

var, parasiticus.

Pammel, L. H. and Carver, 6. W. Treatment of Currants and Cherries

to prevent Spot Diseases. (Journ. Agric. College Exper. Stat.

Ames, Jowa. 1895. Bull. n. 30. p. 289.) c. tab. 7.

Es werden Versuche mitgetheilt zur Behandlung der Blattlleckenkrank-

heiten bei Ribes (Cercospora angulata) und Prunus Cerasus ıCylindrosporium

Padi). Daraus geht hervor, dass Bordeauxbrühe ein ausgezeichnetes Bekämpfungs-

mittel ist.

Pizzigoni, A. Concrena secca ed umida delle Patate. (Nuov. Giorn.

Bot. Ital. 1896. p. 50.)

Auf Grund von Culturversuchen beweist Verf., dass der Trockenfäule der

Kartoffeln von Fusisporium Solani allein, die Nassfäule von diesem selben Pilze

in Verbindung mit Mikroorganismen herrührt.

Puriewitsch, K. Ueber die Stickstoffassimilation bei den Schimmel-

pilzen (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges, 1895. p. 342.)

Verf, theilt die vorläufigen Resultate einiger Culturreihen mit, die es wahr-

scheinlich machen, dass Aspergillus niger und Penicillium glaucum freien Stick-

stoff zu assimiliren vermögen.

Schostakowitsch, W. Ueber die Bedingungen der Conidienbildung

bei Russthaupilzen. (Flora LXXXI. 1895, pP: 362.) c. fig.

Verf. stellt interessante Versuche an über die sedingungen, welche bei

Cladosporium, Dematium, Hormodendron und Kumago nothwendig sind, um die

eine oder andere Wuchsform zu erhalten, Dabei kommt er auch zu bemerkens-

werthen Resultaten über die Abgrenzung der betreffenden Pilze und berichtigt

mehrere Irrthümer früherer Forscher. Es seien die Schlussfolgerungen des Verf.

wiedergegeben:

1. Cladosporium, Ilormodendron und Dematium sind 3 vollständig selbst-

ständige Pilze; 2. Dem. reagirt sehr deutlich auf die Einwirkungen der äusseren

Bedingungen. Es bildet unter gewöhnlichen Verhältnissen meist Hefezellen. In

stark concentrirten Lösungen von Rohr- und Traubenzucker tritt statt der Hefe-

bildung nur steriles Mycel auf. Gleiche Wirkung hat die Verminderung des

Sauerstoffdruckes. Bei 30" erzeugt Dem. Coniothecium-artige Zellkörper; 3. Dem.

lässt sich an höhere Temperaturen gewöhnen, indem man durch lange Zeit

fortgesetzte Culturen bei 30° schliesslich eine Ilefe bekommt, die auch bei 30°

wieder Hefe bildet; 4. Fumago ist ein schr polymorpher Pilz; seine mannigfal'ig

gestalteten Fructificationsorgane stellen eine continuirliche, von einfacher Conidien-

aussprossung bis zur Bildung von complicirten Früchten aufsteigende Reihe

dar; 5. die von Zopf beschriebene Hefe und die aus ihr hervorgehenden Formen

gehören wahrscheinlich nicht zu Fum.; 6. Pepton mit anorg. Salzen, Gelatine,

Asparagin, Glycerin, Milch und Traubenzucker und Maltose rufen die Bildung

der gestielten Conidienträger und -büschel hervor; 7. auf Rohrzucker bei 8—13°

bilden sich nur sitzende Früchte, bei 250 langgestielte und Conidienbündel;

8. Cladosp. und Horm. bilden untergetaucht keine Conidien,; Fum. erzeugt unter-

getaucht die Conidien nur dann, wenn die Nährtlüssigkeit (Milch-, Trauben-,

Rohr-) Zucker enthält.

Smith, E. F. The watermelon disease of the South. (Proc. of the

Americ. Assoc. f. the Advanc. of Sc. 43. Meet. held at Brooklyn 1894.

Salem 1895. p. 289.)

Referat über die Wirkung des neuen Pilzes Fusarium niveum.

Sorel, E. Etude sur l’Aspergillus Oryzae. (Compt. rend. CXXI. 1895.

n. 25. 16 dez. p. 948.)

VI. Moose.

Bescherelle, E. Essai sur le genre Calymperes. (Ann. sc. nat. 8 ser.

[. 1805. p. 247.)

Britton, Elizab. G. Contribution to American Bryology XI. (Bull.

Torr. Bot. Club 1895. p. 447.) c. tab. 2.

1. Coscinodon Raui and C. Renauldi. Die Unterschiede beider Arten

werden gegenüber gestellt.

2, Dicranella heteromalla and its varieties. Die var. orthocarpa wird im

Gegensatz zu Limpricht als Var. aufrecht erhalten.

3. Notes on the Genus Leersia Hedw. Leersia = Encalypta Schreb., welcher

Name der bekanntere ist. Aufgeführt werden E. Macounii Aust., E. ciliata

(Hedw.) Hoffm., E. longipes Mitt.

— A revision of the genus Scouleria. (Proc. of the Americ. Assoc.

f. the Advanc. of Sc. 43. Meet. held at Brooklyn 1894. Salem 1895.

p. 292.) Referat.

— A hybrid among the mosses (l. c.) Referat.

Her

(26)

Camus, F. Note sur le Cryphaea Lamyana (Mont.). (Bull. de la

Soc. Bot. de France 1894, Sess. extraord. en Suisse, 2 part. 1895.

p. CLI.)

Verf, giebt ausführliche Angaben über die Verbreitung des seltenen Mooses.

Cheney, L. $. Sphagna of the Upper Wisconsin Valley (Trans. of

the Wisconsin Acad. of Sc., Arts and Lett. X. 1895. p. 66).

— Hepaticae of the Wisconsin Valley (l. c. p. 70).

Conti, P. les Mousses cleistocarpes et le climat du Tessin. (Bull.

de l’Herb. Boiss. 1896. p. 58.)

Die auftallende Armuth an Phascaccen (2 Arten) in Tessin erklärt Verf.

damit, dass die heitigen Regengüsse die Standorte allzu leicht überfluthen und

die kleinen Moose herausspülen oder mit Erdreich überlagern.

Correns, C. Ueber die Brutkörper der Georgia pellucida und der

Laubmoose überhaupt. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895. p. 420.)

c. tab. et fig.

In dieser vorläufigen Mittheilung bespricht Verf. den Bau und die Ent-

wicklung der Brutkörper von Georgia pellucida und einiger anderer Laubmoose.

Bei der Betrachtung der Brutkörper des ersteren Mooses fallen einige Zellen in's

Auge, die durch eine rundliche verdünnte Membranstelle sich von den anderen

Zellen unterscheiden. Dieses Membranstück verhält sich gegen Reagentien

anders als die übrige Membran. Dadurch war die Ansicht nahe gelegt, dass

diese Zellen eine besondere Funktion haben, Es sind diejenigen Zellen, welche

später mit Fäden auskeimen, wodurch der Name .‚Nematogone“, den Verf. ihnen

giebt, gerechtfertigt wird. Die Untersuchung der Entwicklungsgeschichte der

Nematogone ergab, dass sie durch ganz charakteristische Zelltheilungen entstehen.

Man vergleiche dazu die Arbeit selbst. Verf, deutet die Brutkörper nicht wie

Schimper als umgewandelte Antheridien, sondern als umgewandelte Paraphysen,

eine Ansicht, die er ausführlich begründet. Auch bei anderen Moosen finden

sich in den Brutkörpern Nematogone ausgebildet.

Culmann, P. Supplement an Catalogue de Mousses des environs de

Winterthur (Suisse). (Rev. bryol. 1895. p. 88.)

Holzinger, J. M. Some Hepaticae of Minnesota. (Minnesota Botan.

Studies 1895. p. 460.)

25 Nummern von Lebermoosen angeführt.

Kindberg, N. C. New or less known species of pleurocarpous mosses

from North America and Europe. (Rev. bryol. 1895. p. 81.)

Behandelt werden: Cryphaca Lamyi Mont., Antitrichia gigantea (Sull. et

L.esq.) Kindb., Clasmatodon rupestris (Sull. et Lesq.) Kindb., Thamnium micro-

alopecurum n. sp., Pleurozium calvescens Wils., Pleuroziopsis alaskana James,

Isothecium brachycladon n. sp., J. Howei n. sp., J. Holtii n. sp., J. obtusatulum

n. sp., Leskea Cardoti n. sp., Pseudoleskea heterocladioides n. sp., Neckera

cephalonica Juratzka, Amblystegium pseudo-confervoides n. sp., Eurhynchium

pseudo-velutinoides n. sp., E. acutifolium n. sp., E. subcaespitosum n. sp., E.

Macounii n. sp., Hypnum molluscoides n. sp., H. pseudo-complexum n. sp.,

Camptothecium aureolum n, sp., C. leucodontoides n. sp., Brachythecium ca-

(27)

vernosum n. sp., B. calcareum n.sp., B. subintricatum n. sp., Limnobtion submolle

n. sp., Hypnum subsecundum n. sp., H. miero-reptile (= H. reptile K. Müll.

non Michx.), H. reptiliforme n. sp., H. filiforme n. sp., H. subcomplexum n. sp.,

Fontinalis gigantea Sull.

Kindberg, C. et Roell, J,. Excursions bryologiques faites en Suisse

et en Italie, !’an 1895. (Bull. della Soc. Ital. Botan. 1896. p. 14.)

Die Verff. theilen die Resultate ihrer Moosexcursionen in verschiedenen

Theilen der schweizerischen und italienischen Alpen mit. Aufgezählt sind die

Neuheiten für die betreffenden Districte. Neu sind: Fissidens adiantoides

subsp. n. subtaxifolius Kindb., Barbula helvetica Kindb., Bryum speirophylium

Kindb., Eurhynchium ticinense Kindb.

Levier, EE Muschi exotici, raccolti da esploratori e viagiatori italiani.

(Bull. della Soc. Bot. Ital. 1895. p. 233.)

Uebersicht über die bryologischen Sammlungen, die von Italienern in den

Tropen gemacht sind.

Müller, K. Bryologia provinciae Schen-sı sinensis. (Nuov. Giorn.

Bot. Ital. 1896. p. 89.)

Nach den Sammlungen von Giraldi giebt Verf. eine Aufzählung von 113

Laubmoosen der chinesischen Provinz Schen-si, wovon die meisten neu sind.

Beschrieben werden: Fissidens obsoleto-marginatas, F. sinensi-bryoides, Cono-

mitrium tenerrimum, Distichium papillosum, Mnium incrassatum, M, curvulum,

M. rostellulatum, M. filicaule, Catharinea gracilis, C. rhystophylla, Polytrichum

microdendron P, polythamnion, P. thelicarpum, Bryum Giraldii, B. leptorhodon,

B. germiniferum, B. tectorum, B. camylopodioides, B. flexicaule, B. lepto-Hagellans,

B. nemicaulon, B. oedoneurum, Leptotrichum pruinosum, L. crispatissimum,

Dicranum rectifolium, D. thelinotum, Oncophorus sinensis, Barbula anthropophila,

B. zygodontifolia,, B. sinensis, B. arcuata, B. subtortuosa, B. sinensi-fallax,

tectorum, B. schensiana mit var. longifolia u. tenuissima, B. rufidula,

. eroso-denticulata, Trichostomum lonchobasis, T. sulphuripes, Encalypta

brevisets, Ceratodon sinensis, Philonotis Giraldii P. angularis, Bartramia crispo-

ithyphylla, Drummondia sinensis, D. rubiginosa, Macromitrium Girald'i, Brachy-

steleum polvphylloides, B. microcarpum, Örthotrichum leiolecythis, Entosthodon

sinensis, Grimmia dimorphula, G. filicaulis, G. tenax, G. subtergestina (1. kansuana,

Entodon schensianus, F.amblyophyllus, E.pseudoorthocarpus, Pylaisca entodontea,

Schwetschkea sinensis, Leucodon exaltatus, L.Giraldii, L. agelliformis, L.lasioides,

L. denticulatus Broth., Papillaria helminthoclada mit var. progrediens, Neckera

polyclada, Plagiothecium Giraldii, Drepanophyllaria elegantifolia, D. nivicalyx,

Abietinella Giraldii, Haplocladium macropilum, H.leptopteris, Tamariscella pyceno-

thalla, Ptychodium tanguticum Broth., Anomodon asperifolius, A. Giraldii,

A. sinensi-tristis, A. sinensis, Pseudoleskea papillarioides, Limnobium pachy-

carpulum, Cupressina leptothalla, Cupressina alaris, C. minuta, C. leucodontea,

C. sinensi-mollusca, €. tereticaulis, C. filaris, C. ulophylla, Drepanocladus filicalyx,

D. sinensi-uncinatus, Amblystegium sinensi-subtile, Campylium uninervium,

Eurhynchium subspeciosum, E. protractum, Brachythecium campylothallum,

B. papillifferum, B. amnicolum, B. homocladum, B. pinnirameum, B. permolle,

B. micrangium, Hylocomium Neckerella.

[

Nathorst, A. G. Om nägra fossila mossor fran vara quartara kalk-

tuffaflagringar. (Botan. Notiser 1895 p 253.)

(28)

Nyman, E. Biologiska Moss-studier I. (Botan. Notiser 18095. p. 248.)

Rechin, J. et Camus, F. Rapport sur les Muscindes recoltees pendant

la session extraordinaire A Valais. (Bull. de la Soc. Bot. de France

1894. Sess. extraord. en Suisse 2. part. 1895 p. CCXVIL)

Renauld, F. et Cardot, J, Musci americani septentrionalis exsiccati.

Notes sur quelques especes distribudes dans cette collection. (Bull.

de l'Herb. Boiss. 1896. p. 1.)

Die Verfl. drucken hier ihre Bemerkungen auf den Zetteln der Sammlung

ab geben auch sonst noch Notizen über die einzelnen Arten. Als neu sind

angeführt: Hypnum chrysophyllum var. brevifolium n. v. und H. orbiculari-cor-

datum n. sp.

Underwood, L. M. The evolution of the Hepaticae. (Proc. of the

Americ. Assoc. f. the Advanc. of Sc. 43, Meet. held at Brooklyn

1894. Salem 1895. p. 259.)

Verf. bespricht den phylogenetischen Zusammenhang der Lebermoos-

gattungen untereinander.

Wälde. Beiträge zur Moosflora des mittleren und südlichen württem-

bergischen Schwarzwaldgebietes. (Jahreshefte des Ver. f, vaterl.

Naturk. in Württemberg. LI. 1895. p. 375.)

Verf, stellt seine Funde von Laub- und Lebermoosen im Gebiete zusammen

Die Aufzählung umfasst nur die selteneren Arten, wovon 22 für das Gebiet

zuerst nachgewiesen sind.

Warnstorff, C. Beiträge zur Kenntnis exotischer Sphagna. (Allgem.

Botan. Zeitschrift I. 1895. p. 92, 115, 134, 172, 187, 203, 227.)

Verf, beschreibt folgende Arten: Sphagnum costaricense (Costarica),

>. subacutifolium Schimp. msecr. (Japan), S. nitidum (Nordamerika), S. tenuifolium

(Labrador), S. recurviforme (Viti Isl.), S. subrecurvum (Java), S. angusti-limbatum

(Ostafrika), S. acutum (Borneo), S. Stuhlmannii (Ostafrika), S. irritans (Chatam

Isl.), S. undulatum (Patagonien), S. falcatulum Besch. var. microporum (Falkland

Isl.), S. turgescens (Brasilien), S. Moorei (Tasmanien), S. flavicans (Mexico),

S. Waghornei (Newfoundland), S. borneoense (Borneo), S. japonicum (Japan).

VII. Pteridophyten.

S. Lorenze nel M. Pisano. (Bull. Soc. Botan. Ital. 1895. p. 237.)

In der Aufzählung wird eine grosse Zahl von fossilen Formen aufgeführt.

Ascherson, P. Isoötes echinospora Dur. in Pommern. (Allgem. Botan.

Zeitschr. I. 1895. p. 95.)

Verf, berichtet über die Auffindung von Isoötes echinospora in Pommern.

Atkinson, G. F. Relation betwem the functions of the vegetive and

reproductive leaves of Onoclea. (Proc. of the Americ. Assoc. f. the

Advanc. of Sc. 43. Meet. held at Brooklyn 1894. Salem 1895.

p. 290.) Referat.

ı SB) va re BB a za ni ee aer D B A n Sran.

(29)

Camus, E. @. ct Camus, A. Mlle. Plantes recoltdes A Morcles et A la

Montagne de Fully. (Bull. de la Soc. Bot. de Fance 1894. Sess.,

extraord. en Suisse 2. part. 1895. p. CCCXI.)

Auch einige Pteridophyten aufgeführt.

Goiran, A. Erborizzazioni recenti in una stazione veronese inondata

d’all Adige nel settembre 1882. (Bull. Soc. Bot. Ital. 1895. p. 224.)

Einige Pteridophyten genannt.

Henriques, J. A. Contribuicio para o estudo da flora portugueza.

Cryptogamicas vasculares. (Bolet. de Soc. Brot. Coimbra 1895. p. 57.)

Verf, zählt die in Portugal beobachteten Pteridophyten auf. Zu jeder Species

werden ausführliche Bemerkungen gegeben. Bestimmungstabellen erleichtern

das Auffinden der Species.

Hofmann, H. Die Zwischenform von Asplenium viride Huds. und

A. adulterinum Milde. (Allgem. Botan. Zeitschr. I. 1895. p. 216, 233.)

Es ist hier nicht angängig, die cigenthümlichen Ansichten des Verf. über

Bastardbildung bei Farnen im Allgemeinen und über den fraglichen Bastard im

Besondern näher auseinander zu setzen.

Hollick, A. and Britton, N. L. Flora of Richmond Co., N. Y. Append.

n. 7. (Bull. Torr. Bot. Club. 1895, p. 459.)

Am Schluss einige Pteridophyten genannt.

Linton, W. R. Merionetshire Plants. (Journ. of Botan. 1895. p. 359.)

Am Schluss einige Pteridophyten genannt,

Motelay, L. Isoetes Brochoni Motel. n. sp. (Act. de la Soc. Linn.

de Bordeaux 5 ser. t. V. 1891/92. Bordeaux 1893, p. 45.) c. tab.

Sandri, 6. e Fantozzi, P. Contribuzione alla Flora di Valdinievole

(Fine). (Bull. Soc. Botan. Ital. 1895. p. 289.)

Am Schluss eine grössere Zahl von Pteridophyten aufgeführt,

Saunders, C. F. Scolopendrium. (Linnean Fern Bullet. XII. 1895.

pi 3;)

Smith, J. D. Undescribed plants from Guatemala and other Central

American Republics XVI. (The Botan. Gaz. 1895. p. 538.) c. tab.

Unter Anderem werden beschrieben Asplenium Donnell-Smithii, A. Shepherdi

Spr. var. bipinnatum und Nephrodium nigrovenium (Christ als Autor).

Taubert, P. Beiträge zur Kenntniss der Flora des centralbrasilianischen

Staates Goyaz. (Engl. Jahrb. XXI. 1896. p. 402.) c. tab. 2.

In dem ersten Theil giebt Verf. eine auf der Phaenogamenflora beruhende

Darstellung der Florenverhältnisse von Goyaz, im 2, zählt er die von Ule

gesammelten Arten auf. Darunter sind neu von Pteridophyten: Adiantum

tenuissimum, Notochlaena goyazensis, Aneimia eximia und A. pyrenea.

Van Aubel, M. Contribution a l’etude de la taxite de la foug&re mäle.

(Bull. de l’Ac. roy. de med. de Belg. 1895. n. 8.)

(30)

Sammlungen.

Flora lusitanica exsiccata. Cent. XIV. (Bolet. de Soc. Broter, Coimbra

1895. p. 161.)

Die ersten 6 Nummern enthalten Algen, Pilze, Moose und Pteridophyten.

Collins, F. Sh., Holden J., Setchell, W. A. Phycotheca Boreali-ameri-

cana. Fasc. Ill. Malden, Mass. Sept. 1895.

101. Pleurocapsa fuliginosa Hauck; 102. Oscillatoria tenuis Ag.; 103. Phor-

midium Valdesianum (Delp.) Gom.; 104, Schizothrix fragilis (K.) Gom.; 105. Sch.

lardacea (Ces.) Gom.; 106. Cylindrospermum majusK.; 107. Anabaena variabilisK.;

108. Desmonema Wrangelii (Ag.) Bouch. et Flah.,; 109, Scytonema Myochrous Ag,.;

110. Nostochopsis lobatus Wood; 111. Calothrix parasitica (Chauv.) Thur.;

112. Calothrix Braunii Born. et Flah.,; 113. C. Juliana (Men.) Born. et Flah,;

114. Haematococcus lacustris (Gir.) Rost.; 115. Ulothrix implexa Kg.; 116. Sticho-

coccus flaccidus (K.) Gay; 117. Trentepohlia setifera Farl.; 118. Oedogonium

Bosci (Lil.) Wittr.; 119. Rhizoclonium hieroglyphianum var, macromeres Nordst. ;

120. Cladophora fracta (Fl. Dan.) Kg.; 121. Cl. expansa (Mart.) Kg.; 122. Cl.

fascicularis Kg.; 123. Halimeda Opuntia (L.) Lam.; 124. Dietyosphaeria favulosa

(Ag.) Deen.; 125. Acetabularia crenata Lam.; 126. Ectocarpus terminalis Kg.;

127. Desmotrichum undulatum (J. Ag.) Reinke; 128. Asperococcus echinatus

(Mert.) Grev.; 129. Desmarestia aculeata (L.) Lam.; 130. Leathesia difformis \L.)

Arech.; 131. Postelsia palmaeformis Rupr.; 132. Tuomeya fluviatilis Harv.;

133. Galaxaura rugosa (Sol.) Lam.; 134. G. eylindrica (Sol.) Deen.; 135. Gelidium

cartılagineum (L.) Grev.; 136. Endocladia muricata (P. et R.) J. Ag.; 137. Gigar-

tina horrida Farl.; 138. Rhabdonia tenera Ag.,; 139. Chrysymenia pseudodicho-

toma Farl.; 140. Bostrychia rivularis Harv.; 141. Laurencia tuberculosa var.

gemmifera (Harv.) J. Ag., 142. Chondria dasyphylla (Woodw.) Ag.; 143. Digena

simplex (Wuf.) Ag.; 144. Polysiphonia bipinnata Post. et R,; 145. P. fastigiata

(Roth) Grev.; 146. Dasya subsecunda Suhr; 147. Ania floccosum var.

pacificum Harv.; 148. Centroceras clavulatum (Ag.) Mont.; 149. Melobesia Lejo-

lisii Ros.; 150. Jania capillacca Harv,

Die Exemplare sind vorzüglich aufgelegt; die Ausstattung des Werkes

ist die gleiche Art wie die der Phycotheca universalis von Richter und

Hauck.

Krieger, K. W. Fungi saxonici exsiccati. Fasc. 22 N. 1051 — 1100

Nov. 1895.

51. Ustilago perennans Rostr.; 52. U. Hordei (Pers.) K. et Sw., 53. U. Tri-

tici (Pers.) Jens.; 54. U. violacea (Pers.) Tul.; 55, 56. Sorosporium Saponariae

Rud.; 57. Entyloma microsporum (Ung.) Schröt., 58, 59. Doassansia Martianoffiana

(Thüm.) Schröt.; 60. Uromyces Fabae (Vers.) De Bary; 61. Puccinia Malvacearum

Mont.; 62. P. Asteris Duby; 63, 64, 65. P. Galiüi (Pers.) Wint.; I, II, III. Galium

verum; Asperula glauca; 66. Penicillium insigne (Wint.) Schröt.,; 67. Nectria

Coryli Fuck.; 68. Stigmatca Clymenia (Sacc.) Schröt.; 69. Sphaerulina inter-

mixta (B. et Br.) Sacc.; 70. Entodesmium rude Riess; 71. Massaria inquinans

(Tode) Fr.; 72. Valsa Sorbi (A. et Schw.) Fr.; 73. V. Vitis (Schwein.' Fuck.;

74. Diaporthe viticola Nke.; 75. D. fascieulata Nke.; 76. D. Lirella (Moug. et

Nestl.) Fuck.; 77. Fabraea Ranunculi (Fr.) Karst,,; 78. Tapesia Rosac (Pers.);

79. Lachnea umbronum (Fr.) Gill.; 80. Cladochytrium Sparganii ramosi Krieg.;

81. Physoderma Calami Krieg. n. sp. ; 82, 83. Ph. Magnusiana Kricg.; 84. Sclerospora

(31)

Kriegeriana Magn.; 85. Cercospora Perielymena Wint.; 86. Ovularia Inulae Sacc.,

87. Coniosporium Arundinis (Cord.) Sacc.; 88. Stysanus Veronicae Pass.; 89,

90. Septoria Dianthi Desm.; 91. S. Fragariae Desm.; 92. S. Inulae Sacc. et

Speg.; 93, 94. S. Lychnidis Desm.; 95, 96. S. Polygonorum Desm.; 97, 98. S.

Senecionis West., Senecio nemorensis und S. Fuchsii; 99. Staganospora

Heleocharidis Trail; 100, Dotichiza populca Sacc. et Br.

Romell, L. Fungi exsiccati praesertim scandinavici. cent. II. 1896.

Pr. 17 M.

Nach langer Zwischenpause erscheint jetzt die 2. Centurie des Exsiccaten-

werkes,. Ausser einer Anzahl von häufigeren und weit verbreiteten Arten sind

folgende seltenere Pilze ausgegeben: Clitocybe gilva Pers., Hypocrea Richardsoni

B. et M., Corticium calceum Schroet., Xenocarpus farinellus Karst., Peziza

amorpha Pers., Valsaria stellulata Rom., Mitrula paludosa Fr., Encoclia fascicu-

laris (Alb. et Schw.) Karst.

— Fungi rariores exsiccati.

Unter diesem Titel beabsichtigt Romell eine Sammlung von neuen oder

sehr seltenen Pilzen in Decaden herauszugeben. Der Preis beträgt pro Decade

6M. Naturgemäss kann nur eine kleine Zahl von Exemplaren aufgelegt werden,

weshalb Interessenten das Abonnement auf diese Sammlung baldigst besorgen

mögen. (Die Adresse ist To Fil. Kand. Lars Romell, Stockholm, Sturegatan 56.)

Sydow, P. Mycotheca marchica Centur. 44. — No. 4301-4400.

Nov. 1895.

1. Polyporus versicolor L. var nigrescens Fr.,; 2. Hydnum coeruleum Fl.

Dan.; 3. Calocera palmata (Schum.) et C. viscosa (Pers.) Fr.; 4, U. Sorghi Lk.;

5. Tilletia striiformis (West.); 6. Doassansia Rhinanthi Lagerh. n. sp.; 7. Uro-

myces striatus Schröt. III.; 8 und 9. Puccinia Caricis (Schum.), Carex acuta u.

C. pallescens; 10, 11, 12. P. coronata Cord., Melica nutans, Holcus lanatus, H.

mollis; 13. P. Cyani (Schleich) Pass.; 14. P. graminis Pers. Avena sativa; 15. P.

Peckiana Howe. I. Caeoma interstitiale Tranzsch. Rubus canadensis; 16. Cronar-

tium Naccidum (Alb. et Schw.); 17. Chrysomyxa albida Kühn; 18. Melampsora

epitea (Kze. et Schw.) III. Salix Heckeri; 19. M. Vitellina (DC.) f. fructigena;

20, 21. M. populina (Jaqu.), Populus Fremontii u. P. Sieboldii; 22. M. Vaccinii

(Alb. et Schw.), V. intermedium; 23. Plasmodiophora Brassicae Wor., Nasturtium

palustre; 24, 25. Cystopus candidus (Pers.), Erysimum humile u. Sisymbrium

Loeselii; 26. Peronospora arborescens (Berk.); 27, 28. P. parasitica (Pers.),

Nasturtium palustre u. Sisymbrium Loeselii; 29. P. Radii De Bary, Anthemis

arvensis; 30. Puccinia sessilis Schneid., Diagraphis arundinacea; 31. Cladochy-

trium Alismatis Büsg.; 32. Rhizobium mutabile Schneid. n. sp., Ornithopus

perpusillus; 33, 34. Microsphaeria Alni (DC.), Alnus maritima u. A. rugosa;

35, 36. M. Evonymi (DC.), Evonymus angustifolia u. E. latifolia; 37. Exoascus

Betulae var. autumnalis Sad., Betula verrucosa; 38. Gibberella effusa Rehm n. sp.

39, 40. Valsa ambiens Pers.; 41. V. lata (Pers.) Nke.; 42. Diaporthe inaequalis

(Curr.) f. Amorphae; 23. Ophiobolus acuminatus (Sow.); 44. P. porphyrogalus

(Tode); 45, 46. Pleospora herbarum (Pers.); 47. Leptosphaeria clivensis (B, et

Br.) Sacc.; 48. L. Libanotis Fuck.; 49. Pseudovalsa macrosperma Tul.; 50. Physa-

lospora rosaecola Fuck.; 51. Melanomma Hendersoniae Fuck.; 52. Ceratostomella

pilifera (Fr.) Wint.; 53, 54. Didymosphaeria albescens Niessl; 55. D. crustophila

Niessl, Koeleria cristata; 56. Amphisphaeria umbrina (Fr.); 57. Hypoxylon ser-

pens Pers.; 58. Hypoderma brachysporum (Rochst.); 59. Dematea Betulae Rehm

n. sp.; 60. Barlaea Polytrichi (Rehm); 61. Plicaria muralis (Sow.) Rehm;

(32)

62. umarıa leucolomoides var. pseudoleucoloma Rehm; 63. H.tetraspora (luck. ;

64. Lachnea stercorea (Pers.) n. var. foliicola Rehm; 65, 66. Helotium herbarum

(Pers.); 67. Cyathicula coronata (Bull.); 68. Arachnopeziza Aurelia (Pers.);

69. Erinella Nylanderi Rehm u. form. Clematidis; 70. Phyllachora Junci (Pers.)

Ascusform; 71. Hormodendron Hordei K. Bruhne; 72. P. Sydowiana Bres. n. sp.,

Gaultheria procumbens; 73. Stilbospora angustata (Pers.); 74. Coryneum disci-

forme Con.; 75. Coryneum Sydowianum All. n.sp.; 76. Naemaspora? sclerotioides

All. n. sp.; 77. Vermicularia Dermatium Pers.) Fr.; 78. V. minuta (Lk.) Lib.;

79. Leptostroma Lycopi All. n. sp.; 80. Leptostromella hysterioides (Fr.) Sacc.;

81. Pnoma Galinsogae All. n. sp.; 82. Ph. minutella Sacc et Penz.,; 83. Phoma

Paeoniae All. n. sp.; 84. Macrosporium cladosporioides Desm.;, 85. M. commune

Rabh; 86. Cytospora Salicis (Cord.); 87. Gloeosporium taxicolum All. n. sp.;

88. Scoletotrichum compressum All. n. sp.; 89. Ovularia carneola Sacc.;

90, Ramularia Rhei All. n. sp.; 91. Phyllosticta Dermodiü E, et E. var. bero-

linensis All.; 92. Th. Farfarae Sacc.; 93. Ph. alnicola Sacc.; 94. Septoria olean-

drina Sacc.; 95. S. Paeoniae (West.) u. var. berolinensis All.,; 96. S: seminulis

Sacc. n. var, platanoides All.; 97. Anthina fammea Fr.; 98. Cladosporium

herbarum Pers.; 99, 100. Tubercularia vulgaris Tode; Gleditschia, Hippophae

rhamnoides.

Diagnosen der in Cent. 44 ausgegebenen Novitäten.

N. 4338. Gibberella effusa Rehm nov. spec. in litt.

Perithecia in ligni superficie longe lateque denigrata dense gregaria, sessilia,

subconoidea, poroinconspicue, glabra, siccaatra, 0,15 -0,2mm diam.; parenchymatice

chalybee-coerulee contexta, mollia. Asci clavati, apice rotundati, teneri, c. 70/15,

8spori. Sporidia elliptica vel oblongo-conoidea, recta, hyalina, 4 cellularia, ad

septa haud constricta, 12—15 = 5—6, disticha.

Paraphyses articulatae, tenuissimae et longissimae, hyalinae 8 « lat.

Ad lignum, cariosum horti bot. Berolin.

N. 4359. Dermatca Betulae Rehm nov. spec.

Apothecien einzeln, aber gesellig, hervorbrechend, dann sitzend, zuerst

geschlossen, rundlich sich öffnend und die linsenförmig gewölbte, ganz zart

berandete Fruchtscheibe entblössend, 0,3—1mm breit, nach unten ganz kurz

stielartig verschmälert, blass, ockerfarbig, weisslich bereift, wachsartig.

Schläuche keulig, oben abgerundet und verdickt, 75—90 — 18—24 u, 8sporig.

Sporen länglich, abgerundet, meist gerade, zweizellig, zuletzt durch Quer-

theilung vierzellig, farblos, 15—20 = 6—7 u, zweireihig liegend. Paraphysen oben

gabelig-ästig und bis 6 « rundlich verbreitert, farblos. Hypothecium gelbbraun.

Jod färbt den Schlauchporus violett.

Auf dicker, rissiger Birkenrinde. Wannsee bei Berlin.

Obs. Diese, äusserlich einer Bilimbia ähnelnden Art, ist der Dermatca

eucrita und D. livida nahe verwandt, aber durch viel kürzere Sporen

verschieden.

N. 4362. Humaria leucolomoides Rehm, nov. var. pseudoleu-

coloma Rehm.

Sporen mehr spindelförmig, 21 = 9 u. Paraphysen hakig gebogen, septirt,

oben bis 4 m breit.

N. 4372. Pestalozzia Sydowiana Bresad. nov. spec.

Acervulis epiphyllis, punctiformibus, nigris, erumpentibus, dense sparsis,

in maculis cinereis, angulato-sinuosis, rubro limitatis!, nidulantibus; conidiis

(33)

fusoideis, 4-septatis, loculis mediis fusco-olivaceis, extinus hyalinis, ad septa

vix constrictis, 24—26 = 8 u, apice setulis tribus, erectis vel arcuato-reflexis,

24—38 = 8 u praeditis; stipite brevi, hyalino, 5—7 = u.

Auf lebenden Blättern von Gaultheria procumbens. Berlin, botanischer

Garten.

N. 4375. Coryneum Sydowianum Allesch. nov. spec.

Sporenhäufchen fast halbkugelig, zerstreut, von der Epidermis bedeckt,

am Scheitel etwas erhaben, im Innern schwarz, ca. 0,6—1 mm breit; Conidien

fast spindel- oder keulenförmig, etwas gekrümmt, abwärts verschmälert, mit

6—8 Scheidewänden und einer hyalinen Scheitelzelle, olivenfarbig -bräun-

lich, ca. 50—70 = 12—16 u. Basidien cylindrisch, etwas gebogen, septirt,

40—60 = 3—4 u, fast hyalin.

Auf abgestorbenen Zweigen von Alnus incana. Berlin, Wannsee,

Obs. Von dem am nächsten stehenden Coryneum Kunzei (da. unter-

scheidet sich diese neue Art besonders durch die Zahl der Scheidewände in

den Conidien, die kürzeren, deutlich septirten, nicht hyalinen Basidien und die

von der braunen, unverfärbten, am Scheitel aufreissenden Cuticula bedeckten

Acervuli, welche oft reihenweise angeordnet sind. Coryneum confluens

Nees, auf dem gleichen Substrate auftretend, ist weit verschieden.

N. 4376. Naemaspora? sclerotioides Allesch. nov. spec.

Stroma in langen Reihen unter der Cuticula hervorbrechend, von der un-

regelmässig zerreissenden Epidermis umgeben, sehr hart, fast hornartig, mehr-

zellig, die Zellen von Hyphengewebe erfüllt, aussen rothbraun, etwas rissig,

innen schwarz oder grauschwarz. Conidien fadenförmig, gerade oder etwas

gekrümmt, hyalin, 10—20 — 1 «. Basidien ästig, hyalin, 20—25 —=1 u.

An dicker Eichenrinde. Berlin, Jungfernhaide.

N. 4379. Leptostroma Lycopi Allesch. nov. spec.

Perithecien heerdenweise oder mehr zerstreut, oft zusammenfliessend, oft

unregelmässig, meist jedoch länglich, abgeflacht, gestreift, etwas glänzend,

schwarz. Sporen länglich, auch oft cylindrisch-spindelförmig, gerade oder ge-

krümmt, einzellig, hyalin, 5—7 = 1'h—2 u.

An abgestorbenen Stengeln von Lycopus europaeus. Berlin, Schöne-

berger Busch.

Obs. Ist ein wahres Leptostroma, da sich die Perithecien mit einem

Längsspalt öffnen. Ob der Pilz vielleicht mit Leptothyrium Lycopi Rich.

(Sacc. Syll. X. p. 145) indentisch ist, lässt sich bei der höchst unvollständigen

Originaldiagnose desselben nicht feststellen.

N. 4381. Phoma Galinsogae Allesch. nov. spec.

Perithecien zerstreut, von der Epidermis bedeckt, dann hervorbrechend

mündungslos, von parenchymatischer Structur, bräunlich-olivenfarbig, nieder-

gedrückt kugelig, ca. 50—100 « diam., Sporen eiförmig oder eiförmig-länglich,

beidendig abgerundet, ohne Oeltropfen, hyalin, ca. 5—7 — 21/31), u.

Auf dürren Stengeln von Galinsoga parviflora. Schöneberg bei Berlin,

Obs. Von der ähnlichen Phoma ambiguella Karst. et Har. (Sacc. Syll. X.

p. 169) hinreichend verschieden.

N. 4383. Phoma Paeoniae Allesch. nov. spec.

Perithecien heerdenweise oder auch mehr zerstreut, von der geschwärzten .

Epidermis bedeckt, niedergedrückt kugelig, mit kleiner Papille, von einem Porus

Hedwigia Bd AXXXV. 1890. 3

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| (34)

durchbohrt, von parenchymatischer Structur, schwarzbraun, 80—100 « diam.;

Sporen eiförmig oder länglich, beidendig abgerundet, einzellig, ohne Oeltropfen,

3 hyalin, 5—8 — 3—4 u. PBasidien fadenförmig, hyalin, 30—40 — 1—1!/g u.

| An abgestorbenen Stengeln von Paeonia herbacea mit Leptostromella

| hysterioides (Fr.) Sacc. vergesellschaftet. Steglitz bei Berlin, hort. Metz.

Obs. Von der nahe stehenden Phoma lirellata Sacc. durch Gestalt und

Grösse der Sporen verschieden.

N. 4387. Gloeosporium taxicolum Allesch. nov. spec.

Sporenhäufchen zerstreut, von der endlich aufreissenden Epidermis bedeckt,

linsenförmig, aschgrau. Conidien elliptisch oder länglich, beidendig stumpf,

einzellig, mit wolkigem Inhalte oder mit grösseren Oeltropfen, hyalin, 10—16

—= 5—8 u. Basidien cylindrisch, hyalin, 23—30 = 21,31, u.

Auf Taxus baccata. Muskau O.-L., Arboretum,

Obs. Von Gloeosporium Taxi (Duby) Karst. gänzlich verschieden, ebenso

von Macrophoma Taxi (Berk.) Berl. et Vogl. durch die fehlenden Perithecien

und viel kleinere Sporen.

| N. 4388. Scolecotrichum compressum Allesch. nov. spec.

Räschen heerdenweise, rund, olivenfarbig. Hyphen gedrängt bündelweise,

einfach, etwas knotig und ungleich, olivenfarbig, 50—60 — 5—7 «u. Conidien

spindelig-verkehrt keulenförmig, 20—30 = 6—8 «, mit 1 Scheidewand, gipfel-

ständig, olivenfarbig.

Auf lebenden Blättern von Poa compressa. Lichterfelde bei Berlin.

| Obs. Von Scolecotrichum graminum Fckl. abweichend durch kürzere

Hyphen, kleinere, sich nur am Gipfel der Hyphe bildende Conidien. Sowohl

diese, wie auch noch einige andere Scolecotrichum-Arten dürften deshalb besser

zu Fusicladium zu stellen sein.

N. 4390. Ramularia Rhei Allesch. nov. spec.

Blattflecken beidseitig, etwas erhaben, kreisförmig, oft zusammenfliessend,

rothbraun, in der Mitte verbleichend, 3—5 mm breit. Räschen auf der Blatt-

unterseite, heerdenweise, weiss. Hyphen büschelig vereinigt, fast einfach, auf-

wärts verschmälert und gezähnt, hyalin, 40—45 = 3—5 u. Conidien cylindrisch,

beidendig stumpf, einzellig oder seltener mit 1 Scheidewand, hyalin, 10—30 = 3—4 u.

Auf lebenden Blättern von Rheum undulatum. Steglitz bei Berlin, hort. Metz.

Obs. Von Ramularia Rumicis sicher verschieden,

N. 4391. Phyllosticta Desmodii Ell, et Ev. nov. var. berolinensis Allesch,

Sporen 4—6 = 2—3 u.

Obs. Sporen fast doppelt so gross als bei der Normalform, im Uebrigen

völlig mit derselben übereinstimmend.

N. 4395. Septoria Paeoniae (West.) nov. var. berolinensis Allesch.

Blattflecken fast kreisförmig, ockergelb, mit konzentrischen Zonen, in der

Mitte verbleichend, weisslich, von einem purpurfarbigen Hofe umgeben, 2—8 mm

diam. Perithecien auf der Blattoberseite, heerdenweise, eingesenkt, braun, mit

einem Porus geöffnet. Sporen spindelförmig, gekrümmt, beidendig zugespitzt,

mit vielen undeutlichen Oeltropfen, hyalin, 25—30 = 1!/—2 u.

Auf Paeonia spec. Steglitz bei Berlin, hort. Metz.

N. 4396. Septoria seminalis Sacc. nov. var. platanoides Allesch.

$ Flecken klein, fast kreisförmig, ockerfarbig, ungerandet, ca. 2 mm diam.,;

Perithecien auf der Blattoberseite, klein, bedeckt, heerdenweise, linsenförmig,

schwarz. Sporen nadelartig-spindelförmig, sichelartig gebogen, 60—70 — 2—2'/g u,

4 mit vielen Oeltropfen oder undeutlichen Scheidewänden.

Auf den Cotyledonen von Acer platanoides. Zehlendorf bei Berlin.

BE Re, N 1: a a

(35)

Personalnotisen.

Dr. P. Vuillemin ist zum Professor an der Faculte de Medicine

zu Nancy ernannt worden.

Dr. Ritzema Bos zum Professor der Phytopathologie u. Direktor

des phytopathol. Instituts in Amsterdam ernannt.

Dr. Fr. Saccardo zum Professor der Phytopathologie an der

Weinbauschule zu Avellino ernannt.

Prof. Dr. J. Reinke in Kiel ist der Titel eines Geheimen

Regierungsrathes verliehen worden.

Statthaltereirath Dr. K. B. Schiedermayer, auch als Kryptogamen-

sammler bekannt, starb am 29. October in Kirchdorf in Oberöstereich.

Prof. Dr. M. Woronin in Petersburg wurde zum Ehrenmitglied

der Deutschen Botan. Gesellschaft ernannt.

Prof. Dr. A. Zimmermann hat sich an der Universität Berlin

habilitirt.

Am 28. Januar starb in Genf der bekannte Lichenologe Prof.

Dr. J. Müller (Argoviensis), langjähriger Mitarbeiter der Hedwigia.

Prof. Dr. V. F. Brotherus tritt Mitte April eine Forschungsreise

an über Samarkand und Taschkent nach dem Thianschan. Besonders

sollen die Hochgebirge von Issikul in botanischer, speciell bryo-

logischer Hinsicht erforscht werden.

Von dem Uhnterzeichneten sowie durch jede Buchhandlung

des In- und Auslandes ist zu beziehen:

Die Laubmoose

Grossherzogthums Baden

Wilh. Baur

Apotheker in Ichenheim.

Sonderabdruck aus „Mittheilungen des Badischen Botanischen Vereins“,

Jahrgang 1894.

80 Seiten 8°. Preis Mark 1,60.

Dresden-N. C. Heinrich

Verlagshandlung.

(36)

Oswald Weigel in Leipzig, Königsstr. 1,

Buchhandlung und Antiquariat,

Specialgeschäft für naturwissenschaftliche Literatur,

sucht zu kaufen und erbittet Angebote von:

Rehm, Ascomycetes exsiccati. — Wittrock et Nordstedt, Algae

aquae dulcis exsicc. — Hauck u. Richter, Phykotheka. — Raben-

horst, Algen Sachsens, Algen Kuropas.

Berkeley, Notices of British Fungi. — Bulliard, Hist. des cham-

pignons de la France. — Cooke, Illustr. of British Fungi. 8 Bde. —

Schäffer, Icones Fungorum. — Saccardo, Fungi ital. delin.

(fasc. 17 u. folg.), Sylloge Fungorum. — Krombholz, Abbildgn. der

Schwämme. — Brefeld, Untersuchgn. a. d. Mykologie. — Central-

blatt für Bacteriologie. — Zeitschrift für, wissensch. Mikroskopie. -

Sirodot, Batrachospermes. — Thuret, Etudes phycolog. — Bornet

et Thuret, Notes algolog. — Postels et Ruprecht, Illustr. Algar. —

Bulletin de la Societe mycolog. — Annales des sciences natur.

Botanique. — Turner, Fuci. — Fee, Cryptog. vascul. du Bresil. -

Corda, Icones Fungorum. — Britzelmayr, Hymenomyceten. —

Batsch, Elenchus Fungor. — Sturm, Flora Deutschl. Pilze, etc.

Auch andere Angebote, sowohl von einzelnen werthvollen Werken,

wie grösseren und kleineren Bibliotheken sind stets willkommen und

finden schnellste und sorgfältigste Erledigung.

Grosses antiquarisches Lager. Kataloge gratis und franco.

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Paris. Hue Hautefeuille 19,

versendet auf Verlangen ihren Katalog über Botanik 2 ser. n. 1. Januar 1896 an

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Länder. Erschienen ist Jahrgang I—-XN,

Verlag von Gebr. Bornträger, Berlin.

Hierzu eine Beilage: „Botanischer Lagerkatalog von Oswald

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Redaction: Prof, Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von Paul Hennings und Dr. @. Lindan in Berlin.

Druck und Verlag von €. Heinrich in Dresden.

Repertorium

für

kryptogamische Literatur

Beiblatt zur „Hedwigia“.

Band XXXV. März—- Apr. 1896. Nr. 2.

I. Allgemeines und Vermischtes.

Ascherson, P Max Kuhn. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895. p. [43].)

Bamps, C. Synopsis de la flore du Limbourg belge I. Cryptogames

cellulo-vasculaires et Characdes. Hasselt (W. Klock) 1896. Pr. 2 Fr.

Brand, F. Ueber die Vegetationsverhältnisse des Würmsees und

seine Grundalgen. (Bot. Centralbl. 1896. LXV. p. 1.) c. fig.

Auf Grund genauer Studien theilt Verf. die Vegetationsformen des Würm-

sees in 4 Abtheilungen ein: 1. die Grenzzone, welche durch den periodischen

Wechsel des Wassers bald trocken, bald überfluthet ist, 2. das Weiss bis etwa

2 m unter dem mittleren Wasserspiegel, 3. die Charazone bis etwa 7 m Tiefe,

4. die Nitellazone bis etwa 12 m Tiefe. Charakteristische niedere Kryptogamen

für die einzelnen Zonen sind nicht zu constatiren. Verf. führt die von ihm

beobachteten Algenarten auf, die hauptsächlich auf den Ufersaum beschränkt

sind. Unter 20 m Tiefe finden sich nur vereinzelte Diatomeen und Spaltpilze.

Briquet, J. Notice sur la vie et les oeuvres de Jean Müller. (Bull.

de l’Herb. Boiss. 1896. p. 111.)

Enthält am Schluss eine vollständige Aufzählung der Schriften des leider

so früh verstorbenen Lichenologen.

Campbell, D. H. The Structure and Development of the Mosses and

Ferns. London (Macmillan & Co.) 1895. Mit zahlreichen Figuren.

Pr. 14 sh.

Das Buch soll hauptsächlich eine Uebersicht über die Entwickelungs-

geschichte und damit über den morphologischen und phylogenetischen Zu-

sammenhang der einzelnen Familien und Gruppen der Moose und Farne geben.

Seit den classischen Untersuchungen Hofmeister's hat man das Studium der

Entwickelungsgeschichte der höheren Kryptogamen immer wieder von neuen

Gesichtspunkten aufgenommen, um die Phylogenese dieser Pflanzen zu klären.

Campbell ist durch seine vortrefflichen Arbeiten auf dem Gebiete der Farne

bekannt und bietet nun in dem vorliegenden Buche eine vollständige Zusammen-

stellung unserer Kenntnisse. Der Text ist schr klar und übersichtlich, die Ab-

bildungen, die zum grössten Theil vortrefflich sind, unterstützen das Verständ-

niss des Textes wesentlich, Es wäre wünschenswerth, dass das Buch durch

eine Uebersetzung auch weiteren deutschen Kreisen zugänglich gemacht würde.

Cohn, F. Nathanael Pringsheim. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895.

p. (10).) Mit Bild.

Hedwigia Ba. XXXV, 1896. 4

a a ee N

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(38)

Coville, F. V. Botany of Yakutat Bay, Alaska. (Contrib. from U. S.

Nat. Herbar. Ill. n. 6. Jan. 1896. p. 334.)

Auch Pteridophyten und Moose aufgezählt.

De Toni, @. B. N. Pringsheim. Cenni biografici. (La Nuov. Nota-

risia 1895. p. 97.)

Falkenberg, P. Friedrich Schmitz. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895.

p- [47].)

Göneau de Lamarliere, L. Ftude sur la flore maritime du Golfe de

Gascogne. (Rev. gener. de Botan. 1895. p. 438, 503.)

Graebner, P. Zur Flora der Kreise Putzig, Neustadt i. Westpr. und

Lauenburg i. Pomm. (18. Wandervers. d. Westpr. Bot. Zool. Ver,

zu Christburg in Schrift. der Naturf.-Ges. in Danzig N. F. I. Hft. 1.

1895.) c. tab. 2.

Der erste Theil der Arbeit enthält eine Formationsschilderung des Gebietes

auf Grund der Phanerogamen. Im zweiten Theil sind die Kryptogamen eben-

falls aufgezählt. 6 Characeen (bearb. von Sonder) wurden nachgewiesen. Unter

den von P. Magnus bestimmten Pilzen ist bemerkenswerth: Ustilago hypodytes

auf Elymus arenarius. Der Pilz sitzt in den Intlorescenzen und zieht diese der-

artig auseinander, dass jedes einzelne Blättchen vom anderen durch ein kurzes

Internodium getrennt wird. Werner tauft Magnus das Peridermium Pini Willd. ?.

truncicola Wallr, um in P, truneicola (Wallr.) P. Magn. Ein derartiges Hervor-

suchen des ältesten Namens bei Peridermien ist ohne praktischen Werth, da ja

die bisher als Arten betrachteten Formenkreise in sehr viele Species neuerdings

gespalten werden. Welche von diesen Arten Wallroth vorgelegen hat, lässt sich,

selbst wenn noch Exemplare von ihm vorhanden sein sollten, doch nicht fest-

stellen, da die Arten nicht nach morphologischen Merkmalen, sondern nur nach

der Nährpflanze der Teleutosporen unterschieden werden, Interessant ist das

Vorkommen der Sclerotinia Ledi in Putzig und Lauenburg. Unter den Moosen

und Farnen ist nichts besonders Bemerkenswerthes.

Eine der Tafeln stellt die Ustilago hypodytes vor.

Magnus, P. Joseph Schroeter. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895.

p. 34.)

Schiller, K. Kryptogamen des bayerischen Waldes. (Sitzber. u.

Abhdl. des Naturw. Ver. Isis Jahrg. 1894. p. 71. 1895.)

Verf. giebt eine Anzahl von Pteridophyten, Moosen, Pilzen und Algen an,

die er im bayerischen Wald gefunden hat.

— Ergebnisse seiner Kryptogamenexcursionen im Jahre 1894. (l. c.

Jahrg. 1895. p. 6. 1895.)

Winterstein, E. Zur Kenntniss der in den Membranen einiger Krypto-

gamen enthaltenen Bestandtheile. (Zeitschr. f. physiol. Chemie

XXI. 1896. Heft 23.)

(39)

III. Schizophyten.

Baumgarten, P. v. und Roloff, R. Jahresbericht über die Fortschritte

in der Lehre von den pathogenen Microorganismen, umfassend

Bacterien, Pilze und Protozoen IX. 1893. Abth. 2. Braunschweig

(H. Bruhn) 1896. Pr. 13 M.

Hüppe, F. Naturwissenschaftliche Einführung in die Bacteriologie.

Wiesbaden (C. W. Kreidel) 1895. Pr. 6 M.

Jegunow, M. Bacterien-Gesellschaften. (Centr, f, Bact. u. Par. 2. Abth.

1896. II. p. 11.) c. fig.

Klecki, V. v. Ueber den Reifungsprocess der Käse. Sammelreferat.

(Centr. f. Bact. u. Par. 2. Abth. 1896. II. p. 21, 61.)

Roze, E. Sur quelques Bacteriacdes de la Pomme de terre. (Compt.

rend. 1896. CXXII. n. 9. p. 543.)

Rullmann. Weitere Mittheilungen über Cladothrix odorifera. (Centr.

f. Bact. u. Par. 2. Abth. 1896. II. p. 116.)

Tilden, Josephine EE A new Oscillatoria from California. (Bull.

Torrey Bot. Club 1896. p. 58.) ce. fig.

OÖ. trapezoidea.

IV. Algen.

Batters, E.A.L. Some new British Marine Algae. (Journ. of Botany

1896. p. 6.)

Verf. führt eine Reihe für England neue Cyanophyceen und Florideen auf.

Unter letzteren sind neu: Colaconema Bonnemaisoniae, C. Chylocladiae, C.

reticulatum. Die neue Gattung wächst parasitisch in den Zellwandungen anderer

Algen. Der Thallus ist microscopisch klein, die Fäden anostomosiren häufig.

Monosporangien werden an den Enden oder an seitlichen Auswüchsen der

Fäden gebildet. Trailliella intricata; ebenfalls neue Gattung, verwandt mit

Spermothamnion. Tetrasporen wie bei Rhodochaete gebildet, Thallus aus

Fäden bestehend, Cystocarpien und Antheridien unbekannt.

Benoit. Alteration d’une eau due au developpement de differentes

Algues. (Journ. de Pharmacie et de Chim. II. 1895.)

Boye, P. Bidrag til kundskaben om Algevegetationen ved Norges

vestkyst. (Bergens Museums Aarbog for 1894 — 95. n. 16. 1896.

pP: 1.) 3b ae

Im ersten Theil der Arbeit giebt Verf. eine Schilderung der Formationen

der Algenvegetation an den Küsten. Er unterscheidet die sublitorale und die

litorale Algenflora und giebt diejenigen Arten an, die beide hauptsächlich zu-

sammensetzen. Im zweiten Theil zählt er sämmtliche aufgefundenen Arten auf.

Davon sind neu: Ascophyllum nodosum (L.) Le Jol. f. scorpioides, Myrionema

intermedium, Enteromorpha ramosa.

(40)

Brunotte, C. Contribution A l’etude de la flore de la Lorraine.

Excursion Botanique aux marais sales de la vallee de la Seille.

(Journ. de Botan. 1996. p. 41.)

Nach der Besprechung der Phanerogamenflora kommt Verf. auch auf die

in den Salzsümpfen lebenden Algen zu sprechen. Es finden sich Enteromorpha

intestinalis, Rhizoclonium Navicans, Vaucheria dichotoma, Öscillatoria- Arten,

Lyngbya aestuarii, ferner eine Anzahl von Diatomeen aus 15 verschiedenen

Gattungen.

Collins, F. $S. Notes on New England Marine Algae VI. (Bull.

Torr. Bot. Club 1896. p. 1.)

Verf. giebt Notizen zu einer grösseren Anzahl von Meeresalgen, die zum

ersten Male an den Küsten Nordamerikas gefunden sind. Neu ist Epicladia

eruciata.

De Wildeman, E. les Algues de l’Herbier Schleicher. (Bull. de la

Soc. belge de microsc. XXI. 1895. p. 200.)

Hirn, K. E. Algologische Notizen. (Öfvers. af finska Vet. Soc.

Forhändl. XXXVIII. 1895.) c. fig.

Der erste Theil der Arbeit behandelt badische und schweizerische Algen.

Hauptsächlich sind Oedogonien und Spirogyren gefunden worden. Neu ist

Oedog. ornatum.

Der zweite Theil bringt einige fadenförmige Grünalgen von Würzburg,

darunter Spirogyra daedalea Lagh. var, major n. v.

Gutwinski, R. Ueber die in den Teichen des Zbruezflusses ge-

sammelten Algen. (Anzeig. der Akad. d. Wiss. in Krakau 1895.

p. 45.)

Jenke, A. Neue Funde von Diatomeen und Desmidiaceen in der

Flora von Dresden und seiner Umgebung. (Sitzber. u. Abh. der

Naturw. Ges. Isis Jahrg. 1894. p. 24. 1895.)

Kozlowski, W. lin Beitrag zur Algenflora der Gegenden von

Warschau. (Physiogr. Denkschrift. Warschau 1895. XIII. p. 65.)

Laing, R. M. The Algac of New Zealand: their Characteristics and

Distribution. (Transact. and Proc. of the New Zealand Instit. 1894.

XXVIIL Wellington 1895. p. 297.)

Verf, beiichtet über die Zusammensetzung der marinen Algenflora von

Neuseeland und vergleicht die Flora mit den benachbarten Inseln. Die geo-

graphische Verbreitung der Gattungen und Arten wird dabei eingehend be-

sprochen.

Schmidle, W. Beiträge zur alpinen Algenflora. (Öesterr. Botan.,

Zeitschr. 1895. p. 249, 305, 346, 387, 1896. p. 20, 59, 91.) c. tab. 4

u. fig.

1. Algen aus den Oetzthaler Alpen. Die Algen stammen namentlich aus

kleinen Löchern und Tümpeln, sodann von Felswänden, Gletscherbächen etc.

Neu sind: Hormiscia zonata Arcsch. f. biattenuata, Conferva glacialis Kütz. var,

elongata, Scenedesmus costatus, Oocystis Novaec-Scmliae Wille var. tuberculata,

Be 2.0

Bis

(41)

O. rotunda, Gloeocystis vesiculosa Naeg. var. alpina, Trochiscia Gutwinskii,

Spirotaenia alpina, Closterium Pritchardianum Arch. var. alpinum, C. lunula

Nitzsch. var. biconvexum, Penium didymocarpon var. alpinum n. v., Tetmemorus

levis var. ornatus, Dysphinctium speciosum (Lund.) Hansg. var. tumidum, D.

sparseseptatum, D. parvulum (Breb.) Schmidle var. undulatum, Xanthidium

armatum Breb. var. supernumerarium, X. alpinum, Cosmarium impressulum EIf,

var. alpicola, C. orthopunctulatum, C. persianum var. calvum, C. Netzerianum,

C. limnophilum, C. polonicum Rac. var. alpinum, C. sexnotatum Gutw. var.

subtriomphalum, C. sexnot. var. tristriatum (Lütkem.) Schmidle, C. Österi,

C. speciosissimum, C. nasutum var. euastriforme, C. quassilus Lund. var, alpinum,

Euastrum subcuneatum, E. Boldtii (= E. denticulatum forma Boldt), Micrasterias

papillifera var. verrucosa n. v., Staurastrum lunatum var. alpestre n. v., St. vastum

(= St. aurinatum Nordst. var. vasta Schmidle), St. vastum f. tyroliense, St.

sparse-aculeatum, St. hystrix var. paucispinosum, St. muricatiforme, St. amphi-

doxon var. alpinum n. v, St. gurguliense.

2. Algen aus Davos. Crucigenia quadrata var. octogona n. v., Staurastrum

circulare.

West, W. and West, G. $. Freshwater Algae of Madagaskar.

(Transact. of the Linn. Soc. Bot. 2 ser. V. Pt. II. 1895.) c. tab. 4.

Zacharias, 0., Lemmermann E. und Peucker, K. Ergebnisse einer

biologischen Excursion an die Hochseen und Moorgewässer des

Riesengebirges nebst einer morphometrischen Skizze der beiden

Koppenteiche. (Forschungsber. aus der Biol. Stat. zu Plön.

IV. 1896.) c. fig. u. Karte.

Im ersten Theil der Arbeit schildert Zacharias die allgemeinen biologischen

Verhältnisse der beiden Riesengebirgsteiche. Es werden dabei auch die darin

bisher beobachteten Algen zusammengestellt.

“

Im zweiten Theil giebt Lemmermann cıne Uebersicht über die Algenflora

des Riesengebirges. Das einleitende Kapitel bringt in erster Linie Notizen über

die bisherige Literatur der Riesengebirgsalgentlora und über diejenigen Samm-

lungen, die der gegenwärtigen Bearbeitung zu Grunde liegen. Es sind dies die

von Hieronymus, Kramsta und Zacharias. Verf. vergleicht die im Hochgebirge

vorkommenden Formen mit denen Skandinaviens und der Alpen. Hierbei

kommt er zu sehr interessanten Uebereinstimmungen. Das eigentliche Ver-

zeichniss umfasst 170 Arten, Für jede Species wird Fundort und Sammler an-

gegeben, sowie häufig Bemerkungen gemacht, die sich z. T. auf Notizen von

Hieronymus stützen. Neu sind folgende: Hormiscia (Ulothrix) Hieronymi, Scene-

desmus costatus Schmidle var. sudeticus, Botryococcus sudeticus, Hyalotheca

dissiliens (Sm.) Breb. var. punctata, Mesotaenium Kramstei, Closterium pseudo-

spirotaenium mit den var. typicum, fasciculatum und variabile, Penium Digitus

(Ehrbg.) Breb. var. montanum, Staurastrum Hystrix Ralfs var. papilliferum,

Synechococcus major Schroet. var. maximus. Merkwürdigerweise reiht Verf.

die Peridineen Gymnodinium und Glenodinium und die Euglenee Trachelomonas

unter die Chrysomonadina ein.

Der dritte Theil, von Peucker verfasst, enthält die Tiefenverhältnisse der

beiden Teiche.

Aubert, A. B. Diatomees du Mont Ktaadn (Katahdiu). (Le Diatomiste

1895. p. 211.)

ni nen Babe a EN Ze

(42)

Edwards, A. M. Fossil Diatomaceae. (Journ. of the Quekett Microsc.

Club 2 ser. VI. n. 36. März 1895. p. 1.)

Knoll, M. Die Diatomeen des Harzes, insbesondere der Grafschaft

Wernigerode. (Schrift. des naturw. Ver. des Harzes in Wernigerode

1895 p. 78.)

Verf. giebt eine kurze Beschreibung des Präparationsverfahrens bei

Diatomeen und zählt die gefundenen Arten auf,

Lauterborn, R. Ueber das Vorkommen der Diatomeen - Gattung

Atheya und Rhizosolenia in den Altwassern des Oberrheins. (Ber.

d. Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 11.)

Verf. entdeckte die beiden marinen Gattungen Atheya und Rhizosolenia

auch in den Altwassern des Rheins, sowie im fliessenden Rhein selbst. Nach-

dem sie vor Kurzem im Plöner See entdeckt worden sind, gewinnt die Ansicht

an Wahrscheinlichkeit, dass sie weit im Süsswasser verbreitet sind. Die Arten

kommen nicht zu allen Jahreszeiten vor, sondern sind an bestimmte Monate

gebunden. Durch den Nachweis dieser Formen erhöht sich die Zahl der marinen

Diatomeenarten im Rhein auf 10,

Müller, 0. Die Ortsbewegung der Bacillariaceen. II. (Ber. d.

Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 54.) c. tab. 2.

Verf. weist die Unhaltbarkeit der Ansicht von Hauptfleisch nach, dass die

Diatomeen sich mit zarten Plasmafortsätzen bewegen sollten. Er hält diese

feinen Knöpfchen lediglich für Fremdkörper. — Die Gallerthüllen bestehen nicht,

wie häufig angenommen wird, aus Stäbchen, sondern entstehen aus zusammen-

fliessenden Tröpfchen, die an den Polen der Zelle ihren Ursprung nehmen. —

Endlich werden einige Beobachtungen über den Körnchenstreifen bei sich

bewegenden Diatomeen, mitgetheilt. Da die die Körnchen verbindende Masse

weder sichtbar noch auch färbbar ist, so glaubt Verf., dass überhaupt keine

verbindende Gallerte vorhanden sei, sondern dass die Körnchen im Wasser

gleichsam wie ein Rauchstreifen schweben.

Nelson, E.M. Markings on Navicula major. (Journ. Ouekett Microsc.

Club. 2 ser. VI. n. 37. Nov. 1895. p. 144.)

Schilberszky, K. Ueber Bewegungserscheinungen der Bacillariaceen.

(Bot. Centralbl. LXV. 1896. p. 33.)

Verf. giebt an, dass sich durch die von Hauptfleisch beobachteten Plasma-

fortsätze nicht alle Bewegungserscheinungen der Diatomeen erklären lassen.

Ausser der Kriechbewegung muss noch die Schwebebewegung unterschieden

werden.

Tassi, FE Le Diatomaceae delle fonti di Siena. (Atti della r. acc.

dei Fisiocritici in Siena. 4. ser. vol. VI. 1895. fasc. 10. vol. VII.

fasc. 1—3.) a ns

Borge, O0. Uebersicht der neu erscheinenden Desmidiaceen-

Literatur IV. (La Nuov. Notarisia 1895. p. 111.)

Cramer, C. Ueber Halicoryne Wrightii Harv. (Vierteljahrsber. der

Naturf. Ges. in Zürich. XL. 1895.)

Vi SE u 2 0 ner A ine: asia ann ae Bath ee an.

(43)

Cramer, C. Die Siphoncen in Keller, Das Leben des Meeres. Leipzig

1895 (Tauchnitz).

Degagny, Ch. Recherches sur la division du noyau cellulaire chez

les Vegetaux III, (Bull. de la Soc. Bot. de France 1895. p. 635.)

Verf. schildert die Kerntheilung bei Spirogyra setiformis bis zum Ver-

schwinden der Kernmembran.

France, R. Beiträge zur Kenntniss der Algengattung Carteria,

(Termeszetrajzi Füzetek XIX. Hf. 1. 1896. p. 105.) c. tab.

Die von Dill beschriebene Art Carteria obtusa konnte der Verf, sammeln

und näher studiren. Im Wesentlichen bestätigt er die Angaben Dill's über die

Entwicklung der Alge, giebt aber noch verschiedene Ergänzungen dazu. Wichtig

ist die Beobachtung, dass sich das Chlorophor bei Carteria (überhaupt bei den

Volvocaceen) verändert; so war ces hier erst scheibenförmig und löste sich

nachher in einzelne Bänder auf. Die verschiedenen Entwicklungsphasen der

Alge sind auf der Tafel trefflich abgebildet.

Hirn, K. E. Die Finländischen Zygnemaceen. (Act. Soc pro faun.

et flor. Fenn. XI. n. 10. 1895.) c. tab.

Verf. bringt eine Aufzählung der finischen Zygnemaceen ohne Diagnosen,

aber mit genauen Standorten. 41 Arten sind bekannt, davon 12 Mougeotia-,

3 Zygnema- und 26 Spirogyra-Arten. Neu sind Spirogyra sphaerospora Sp.

punctata Cleve var. major n. v., S. kunsamoäönsis. Ein Verzeichniss der Literatur

schliesst die Arbeit.

Richter, P. Scenedesmus und die rothen Körner von Gloiotrichia

echinulata. (Ber. d. Naturforsch. Ges. zu Leipzig 189596.)

Verf. spricht über Scenedesmus mit besonderer Bepiprsichtieung seiner

Art S. opoliensis. — Ueber die rothen Körner in den Zellen von Gloiotrichia

echinulata theilt er mit, dass man es hier nicht mit Gasvacuolen zu thun

hat, wie Klebahn meint. Es befinden sich im Plasma vielmehr kleine Risse

und Hohlräume, welche mit nicht genau achromatischen Mikroskopen farbig

erscheinen, speciell bei unterverbesserten Linsen roth. Verf. hält also die

rothen Körnchen nur für eine optische Täuschung.

Setchell, W. A. Sphaeroplea annulina in California. (Erythea 1896. p. 33.)

Sauvageau, C. Note sur le Strepsithalia, nouveau genre de Pheosporce.

(Journ. de Botan. 1896. p. 53.) ce. fig.

Von dem neuen Genus werden 2 Arten in ausführlicher Weise beschrieben

und die Einzelheiten abgebildet. Strepsithalia Bornet in herb. dürfte am nächsten

mit Streblonema verwandt sein. S. curvata Sauv. wächst endophytisch in

Helminthocladia purpurea, S. Liagorae Sauv. auf Liagora visicida und Helmintho-

cladia purpurea. Beide stammen aus dem Meere vom Dept. Basses - Pyrenees.

Allen, T. F. Nitella subspicata n. sp. (Bull. Torr. Bot. Club 1896.

p. 6.) c. tab.

Die neue Art stammt aus Missouri.

a ai

(44)

Church, A. H. Structure of thallus of Neomeris dumetosa. (Annals

of Bot. 1895. n. 12.) c. tab. 3.

De Toni, G. B. Notizia sulla Hildenbrandtia rivularis (Liebm.)

J. Ag. (La Nuov. Notar. 1895. p. 107.)

Notiz über das Vorkommen der Alge bei Galliera Veneta.

Foslie, M. New or critical Lithothamnia, (Kgl. Norske Vidensk. Selsk.,

Skrift. 1895.) Trondhjem. c. tab.

Schmitz, F. Kleinere Beiträge zur Kenntniss der Florideen. (La

Nuov. Notar. 1896. p. 1.)

Diese nachgelassene Arbeit des vor Jahresfrist verstorbenen Algenforschers

richtet sich gegen eine Arbeit von Holmes, worin dieser Ansichten geäussert

hatte, welche von Schmitz nicht getheilt werden. Schmitz ist über 4 Arten

abweichender Meinung und setzt die Gründe dafür ausführlich auseinander,

V. Pilze.

Bokorny, Th. Notizen zur Kohlenstoff- u. Stickstoffernährung der

Pilze. (Chemiker-Zeit. XX. 1896. p. 69.)

Bourquelot, E.E Rapport sur les excursions faites par la Societe

mycologique de France etc. (Bull. de la Soc. mycol. de France,

X1ll. 1896. p. XII.)

De Wildeman, E. Notes mycologiques VI. (Ann. de la Soc. belge

microsc. IX. 1895. p. 189.)

Ellis, J. B. and Bartholomew, E. New Kansas Fungi. (Erythea 1896.

p. 1,23.) N. A.

Gilson, E.E Recherches chimiques sur la membrane cellulaire des

Champignons. (La Cellule XI. 1895. p. 7.)

Humphrey. In New Jersey beobachtete Krankheiten. (Zeitschr. f.

Pflanzenkr. 1896. p. 20.)

Nach der Zusammenstellung von Halsted.

James, J. F. Remarks on a „Catalogue of Ohio Plants“ by Keller-

mann and Werner. (The Journ. of the Cincinnati Soc. of Natur.

Hist. XVII. 1895. p. 46.)

Verf, macht zu dem Catalog der beiden Autoren über die Literatur der

Pflanzen von Ohio mehrere Ergänzungen in literarischer Beziehung. Namentlich

sind mycologische Arbeiten angeführt. Zum Schluss folgt eine Liste von Pilzen

und Myxomyceten, die nachzutragen sind.

Lloyd, C.G. Photogravure of American Fungi. Cincinnati 1896.

Die letzten Sendungen enthalten Lycoperdon separans, Urnula craterium,

Morchella conica, Peziza badia,

Die Ausführung ist wie bei den früheren Bildern eine ganz vorzügliche.

(45)

Mc Weeney, E. J. Fungi from Brackenstown Co. Dublin. (The

Irish Naturalist 1895. n. 3.)

Miyoshi, M. Sak&-no-Kasu als Nährboden für Pilzculturen. (The

Tokyo Botan. Magaz. 1896. n. 107. Pt. II. p. 1.)

Sterilisirte „Sake-no-Kasu‘ eignet sich vortrefflich als Nährboden für viele

Schimmelpilze.

Molliard.. Revue des travaux de Teratologie et de Pathologie

vegetales parus dans les anndes 1892, 1893 et 1894. (Rev. gener.

de Botan 1895. p. 465, 525.)

Morgan, R. A. New North American Fungi. (Journ. of the Cincinnati

Soc. Nat. Hist. XVIII. 1895. p. 36.) ce. tab. 2.

Diese Arten sind im Elenchus (Rep. VII.) aufgenommen.

Neuere, in den östlichen Staaten Nord-Amerikas aufgetretene Pflanzen-

krankheiten. (Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1895. p. 336.)

Zusammenstellung nach Halsted.

Noack, F. Nachträgliche Notizen über französische phytopathologische

Arbeiten. (Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 21.)

Patouillard, N. Illustrations des esp£ces nouvelles, rares on critiques

de Champignons de la Tunisie. (Exploration scientif. de la Tunisie.)

Paris. (Impr. Nation.) 1892 95.

Auf 5 mustergiltig gezeichneten und lithographirten Tafeln werden folgende

Pilze abgebildet: Taf. I. Tubaria ptychophylla Pat., Coprinus arenarius Pat.,

Tulostoma carneum Pat., Tirmania ovalispora Pat., Hysterographium Artemisiae

Pat.. Sphaerulina muscicola Pat., Macrosporium Asphodeli Pat. Taf. II. Ganoderma

Fici Pat., Ptychogaster Fici Pat., Galactinia Lefebvrei Pat., Galactinia tunetana

Pat., Ascophanus Opuntiae Pat., Orbilia serpentina Pat., Amphisphaeria Phoenicis

Pat., Cucurbitaria Retamae Pat., Neottiospora coprophila Speg. Heterosporium

gracile Wallr. var. Muscaridis Pat. Taf. III. Tulostoma carneum Pat. var. nanum

Pat., Tulostoma montanum Pat., Podaxon Perraldieri Pat., Montagnites tenuis

Pat., Montagnites Candollei Fr., Typhula Asphodeli Pat., Pistillaria Cytisi Pat.,

Melanospora octaedrica Pat., Pleosphaeria quercina Pat. Taf. IV. Gyrophana

janthinospora Pat., Fomes fomentarius Fr., Pleurotus Chevallieri Pat., Dryodon

Erinaceus (Bull.) Quel.,, Exidia Benieri Pat., Poronia Doumetii Pat., Coryneum

Pistaciae Pat., Melanconium hysteriopsis Pat. Taf. V. Boletus tunetanus Pat.,

Leucoporus rhizophilus Pat., Corticium calothrix Pat., Asterostroma Gaillardi Pat.,

Terfezia Boudieri Chat. var. pedunculata Pat., Phaeangium Lefebvrei Pat.

‚Ray, J. Mucor et Trichoderma. (Compt. rend. CXXII. 1896. n. 1.

p. 46. n. 6. p. 338.)

IV. Report on Collections made in 1894—95. (Botanical Survey of

Nebraska. Lincoln. Nebr. 1896.)

Enthält die Beschreibungen vieler neuer Pilze und in einer Aufzählung

Ergänzungen zur Flora von Nebraska, hauptsächlich Algen und Pilze.

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(46)

Reuter E. Bericht über die im Jahre 1894 in Norwegen beobachteten

schädlichen Insecten und Pflanzenkrankheiten. (Zeitschr. f. Pflanzenkr.

1896. p. 30.)

Starbäck, K.. Om Parasitsvampar. Upsala 1895. (Sommerskurserna

in Uppsala 1895.) c. fig.

In dem kleinen Heftchen wird eine elementare Einleitung in das Studium

der parasitischen Pilze gegeben. Es werden einige der gewöhnlichsten Arten

besprochen und abgebildet.

Vuillemin, P. Mucor et Trichoderma. (Compt. rend. 1896. CXXIH.

n. 5. p. 258.)

Winterstein, EE Zur Kenntniss der in den Membranen der Pilze

enthaltenen Bestandtheile II. (Zeitschr. f. physiol. Chemie XXI.

1896. Heft 2/3.)

Morini, F. Note micologiche. (Malpighia 1896. p. 72.) c. ab.

Es werden genauere Beobachtungen mitgetheilt über Rhizophidium messa-

nense n. sp., Mucor racemosus (Zygosporen), Phycomyces Pirottianus n. sp. u.

Lachnea hirta.

Leger, M. Structure et developpement de la Zygospore du Sporodinia

grandis. (Rev. gener. de Botan. 1895. p 481.) c. tab. 4.

Verf. studirt die Bildung der Zygosporen und ihre Auskeimung. Haupt-

sächlich wendet er sein Augenmerk den Kernen und der anatomischen Structur

der Zygosporen zu. zu. Hier sind allerlei interessante Th@sachen zu Tage gefördert

worden. Am wichtigsten ist die Beobachtung, dass in der reifen Zygospore

2 „Spheres embryonnaires“ vorhanden sind, die durch Vereinigung eine Art von

Embryo bilden; dieser saugt den übrigen Inhalt der Spore auf und wird zur

jungen Pflanze, nachdem die Membran gesprengt ist. Eine Bestätigung dieser

Beobachtung oder wenigstens ihrer Deutung bleibt abzuwarten.

Schilberszky, K.. Ein neuer Schorfparasit der Kartoffelknollen.

(Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 36.)

Auf schorfigen Kartoffeln beobachtete Verf. in den Zellen einen einzelligen

Parasiten, der sich durch Schwärmsporen vermehrt. Die Sporangien sind gelb-

braun gefärbt. Als Name wird Chrysophlyctis endobiotica nov. gen. et. nov.

spec. vorgeschlagen.

Thaxter, R, New or peculiar aquatic fungi. 3 Blastocladia. (The

Botan. Gaz. 1896. p. 45.) c. tab,

Verf. entdeckte die bisher nur einmal gefundene Blastocladia Pringsheimii

Reinsch wieder und studirte ihre Entwickelung. Die Stellung der Gattung lässt

Verf. auch jetzt noch ungewiss. Vielleicht lässt sie sich an die Pythiaceen

anschliessen oder zum Vertreter einer eigenen Familie erheben. — Zugleich wird

eine neue Art der Gattung beschrieben, B. ramosa, an untergetauchten Zweigen

in Sümpfen.

(47)

Brefeld, 0. Der Reisbrand und der Setariabrand, die Entwicklungs-

glieder neuer Mutterkornpilze. (Botan. Centralbl. LXV. 1896. p. 97.)

Im XII. Heft seiner Untersuchungen hatte Brefeld nachgewiesen, dass die

als Tilletia Oryzae bezeichnete Brandpilzform nicht zu den Ustilagineen gehört,

sondern nur das Chlamydosporenstadium eines Ascomyceten darstellt. Es war

damals noch nicht gelungen, zu diesem, sowie zum Brande auf Setaria Crus

Ardeae die höhere Fruchtform zu erhalten. Diese Lücke zu schliessen, ist der

Zweck der vorliegenden Mittheilung.

Der Pilz auf Setaria bildet in den Fruchtknoten Sclerotien. Durch Fritz

Müller in Blumenau erhielt Verf. grössere Mengen von gutem Material, mit dem

weitere Versuche gemacht werden konnten. Die Sclerotien wurden im Warm-

hause auf feuchten Sand gelegt und blieben hier 6 Monate, ehe sich die ersten

Keimungsstadien zeigten. Die Auskeimung erfolgte ähnlich wie bei Claviceps.

Es wuchs ein dünner Stiel heraus, der oben ein Köpfchen trug, in dem die

Perithecien gebildet wurden. Die Sporen sind schr lang, fadenförmig und theilen

sich vor der Keimung in mehrere Stücke, von denen jedes mit 1—2 (in Wasser)

oder vielen (in Nährlösung) Conidien auskeimte. Diese Conidien sind genau

mit denen identisch, die von den „Brandsporen“ gebildet werden.

Wie bereits im XII. Heft begründet, gehören die beiden Pilze zur neuen

Gattung Ustilaginoidea, deren Stellung im System durch die mitgetheilten

Beobachtungen festgelegt ist. Ustilaginoidea gehört zu den Hypocreaceen in

die Nähe von Claviceps und würde sich nur durch das Vorhandensein der

Chlamydosporen von dieser Gattung unterscheiden.

Vuillemin, P. Les Hypostomacees, nouvelle famille de Champignons.

(Compt. rend. 1896. CXXII. n. 9. p. 545.)

Cockerell, T. D. A. Schizophyllum Egelingianum. (Bull. Torrey Bot.

Club 1896. p. 59.)

Notiz über einen Fund des Pilzes bei Mesilla in Neumexico.

Costantin, J. Note sur la culture de la „Pietra fungaia“. (Rev.

gender. de Botan. 1895. p. 433.) c. tab.

Verf beobachtete die Auskeimung der als Pietra fungaia bekannten

Sclerotien des Polyporus Tuberaster. Er suchte dabei hauptsächlich die Be-

dingungen festzustellen, welche für eine Cultur im Grossen innezuhalten sind.

Leider zeigten die bisherigen Versuche, Culturen in grösserem Maassstabe an-

zulegen, wenig Aussicht auf Erfolg.

Duggar, B. M. Variability in the spores of Uredo Polypodii (Pers.)

DC. (Proc. of the American Ac. of Arts and Sc. Boston. XXX.

1895. p. 396.) c. tab.

Verf. macht Angaben über die grosse Variabilität in der Grösse der Uredo-

sporen von Uredo Polypodii.

Istvanffi, 6. v. Neuere Untersuchungen über die Secretbehälter der

Pilze. (Termeszetrajzi Füzet. 1895. p. 308.) Ung. Text p. 240. c. tab.

Vergl. dazu die Arbeit des Verf. in der Rev. mycol. 1896. p. 1. (Cr,

Hedwigia 1896. Rep. I. p. 18.)

(48)

Klebahn, H. Culturversuche mit heteröcischen Rostpilzen. IV.

(Zeitschr. für Pflanzenkr. 1895. p. 257, 327.) c. fig.

1. Coleosporium Melampyri. Aus Culturversuchen liess sich die Ver-

schiedenheit von C. Melampyri und Euphrasiae folgern.

2. Es gelang Verf., zu Aecidium Serratulae die Teleutosporenform auf einer

Carex zu finden, Infectionen mit Teleutosporen ergaben Aecidien auf Serratula,

umgekehrte Infectionen gelangen nicht. Eigentlich müsste die Puceinia nach

dem Namen des Aecidiums P, Serratulae genannt werden, da aber dieser Name

dem Verf. nicht passend erscheint, wählt er P, Schroeteriana, obwohl es bereits

P. Schroeteri giebt. Man kann den Kryptogamforschern nur dringend anrathen,

sich mit den jedem Phanerogamenforscher geläufigen Regeln der Nomenclatur

vertraut zu machen, damit endlich einmal die Namensgebung von festen Regeln

und nicht vom Geschmack des Autors abhängig gemacht wird.

3. Durch Culturversuche bestätigt Verf, die Zusammengehörigkeit von

‚ec. Parnassiae mit Pucc. uliginosa auf Carex Goodenoughii.

4. Pucc. Digraphidis bildete nach Infection Aecidien auf Polygonatum, Majan-

themum, Convallaria und Paris. Daraus folgt die Identität der Aecidien.

5. Nach weiteren Culturen mit Pucc. Caricis und Pringsheimiana erscheint

es Verf. zweifelhaft, ob die beiden Pilze verschieden sind,

6. Aecidien von Triphragmium Ulmariae ergaben Uredo auf Spiraea

Ulmaria. Aecidium auf Valeriana officinalis bildeten aber nicht Uromyces

Valerianae bei der Aussaat.

7. Versuche mit Pucc, coronata und coronifera zeigten, dass die Pilze auf

den verschiedenen Gramineen nicht identisch sind. Verf. unterscheidet vor-

läufig: P. coronifera Avenae auf Avena sativa; P. coronifera Lolii auf Lolium

perenne, P. coronata Calamagrostis auf Calamagrostis lanceolata; P. coronata

Phalaridis auf Phalaris arundinacea.

Pieters, A. J The history of the Uredineae. (The Asa Gray Bulletin

III. 1895. p. 8.)

Sappin-Trouffy. Sur la signification de la fecondation chez les

Uredinees. (Compt. rend. 1896. CXXII. n. 6. p. 333.)

Wakker, J. H. Eine Zuckerrohrkrankheit, verursacht durch Marasmius

Sacchari n. sp. (Centr. f. Bact. u. Par. 2. Abth. 1896. II. p. 44.) c. fig.

Verf. berichtet über eine Zuckerrohrkrankheit, welche sowohl junge An-

pflanzungen ergreift, wie auch in älteren grossen Schaden anrichtet. Aus den

Versuchen geht hervor, dass das Mycel parasitisch im Zuckerrohr lebt. Dasselbe

erhält sich in alten Stengeln und wird von hier aus auf die jungen Pflanzen

weiter verbreitet. Es gelang, aus dem Mycel, das niemals Sclerotien bildet, die

Fruchtkörper eines Marasmius zu erziehen. Verf. sagt: „Anstatt diese 320 meist

kurzen Diagnosen (der Saccardo’schen Sylloge) zu vergleichen, ziehe ich es vor,

die Art, die uns hier beschäftigt, mit dem Namen Marasmius Sacchari zu be-

legen.“ Das ist ein Verfahren, das ebenso kurz wie unwissenschaftlich ist.

Verf, giebt auch Bekämpfungsmittel der Krankheit an.

Wagner, G. Beiträge zur Kenntniss der Coleosporien und der Blasen-

roste der Kiefern. (Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 9.)

Mittheilung einer Reihe von Culturresultaten mit Peridermiumsporen. Auf

Grund deren trennte Verf. vorläufig das Coleosporium Senecionis auf Senecio

Fuchsii und nemorensis als Forma il ab. Zu Coleosporium Petasitis gehört

(49)

Perid. Dietelii n. sp. Zu dem Coleosporium Cacaliae auf Adenostyles gehört

ein Peridermium Magnusii n. sp. auf Pinus montana. Coleosporium subalpinum

Wagn. auf Senecio subalpinus hat auf Pinus montana das Perid, Kriegerii n. sp.

als Nebenfruchtform.

Wendisch, EE Das Champignonbeet der Liebhaber. (Natur u. Haus.

1896. Heft 5.)

Allescher, A. Eine Bemerkung zu Diaporthe tessella (Pers.) Rehm.

(Allgemeine Botan. Zeitschr. Il. 1896. p. 20.)

Nachweis, dass Diaporthe tessella = Melanconis salicine EI. et Ev. ist. Da

der Pilz besser zu Melanconis gestellt wird, so hat er den Namen M. tessella

(Pers.) Allesch. zu führen.

Boudier, 6. Note sur une nouvelle esp&ce de Prototremella Pat.

(Journ. de Bot. 1896. p. 85.) c. fig.

Verf. beschreibt eine neue Art der Gattung Prototremella (= Pachysterigma),

P. calospora, die sich auf faulender Leinwand bei Paris fand.

Chatin, A. Truffes (Terfas) de Chypre, de Smyrne et de la Calle.

(Bull. de la Soc. Bot. de France. 1895. p. 549.)

Von Cypern erhielt Verf. Terfezia Claveryi, von Smyrna und La Calle

Terfezia Leonis.

— Truffe de Teheran. (Bull. de la Soc. Bot. de France. 1895.

p. 619.) c. fig.

Beschreibung der neuen Art Terfezia Hanotauxii.

Eliasson, A. 6. Taphrina acerina n. sp. (Bihang till K. Svenska

Vet. Ak. Handl. XX. Afd. III. n. 4. 1895. p. 1.) c. tab.

Genaue Beschreibung der neuen Art.

Frank. Der Lupinenrost, ein neuer Feind der Lupinen. (Deutsche

landw. Presse XXII. 1895. p. 715.)

Harper, R. A. Beitrag zur Kenntniss der Kerntheilung und Sporen-

bildung im Ascus. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895. p. |67|.) c. tab.

Die Arbeit ist eine ausserordentlich genaue und vollständige Studie über

die Kerntheilungsvorgänge im Ascus von Peziza Stevensoniana und Ascobolus

furfuraceus. Es würde zu weit führen, die Einzelheiten hier zu schildern; dies

würde Abbildungen zur Voraussetzung haben. In einigen Punkten weicht Verf,

von den Resultaten früherer Forscher, z. B. Gjura$in, ab, weist aber ausführlich

die Berechtigung seiner abweichenden Ansicht nach.

Harvey, F.L. Contribution to the Pyrenomycetes of Maine I. (Bull.

Torrey Bot. Club. 1896. p. 50.)

Aufzählung von 122 Pyrenomyceten. Neue sind nicht darunter,

Jaczewski, A. de. Monographie des Calosphaerices de la Suisse.

(Bull. de !’Herb. Boiss. 1896. p. 78.)

Vorhanden sind in der Schweiz die beiden Gattungen Calosphaeria und

Robergea. Von der ersteren Gattung sind vorhanden: C. obvallata Ötth., C.

but

(50)

gregaria (Lib.) Nke., C. occulta Otth., C. minima Tul., C. Friesii (Fuck.) Jacz.

(= Enchnoa Fr. Fuck.), C. princeps Tul., €. dryina (Curr.) Nke., C. pusilla

(Wahlbg.) Karst., C. corylina Nke. Die 2. Gattung besizt nur die eine Art

R. unica Desmaz.

Magnus, P. Ursache der Bildung einiger an Bäumen und Sträuchern

auftretender Hexenbesen und deren Vorkommen in der Provinz

Brandenburg. (Brandenburgia 1896. Januar.) 2

Massee, EE Root Diseases caused by Fungi. (Bull. of Miscell.

Informat. Kew. 1896. n. 109. p. 1.) c. tab.

Von Neuseeland wurde ein gefährlicher Schädling der Baumwurzeln in den

Obstgärten eingesendet und auf seine Gefährlichkeit hingewiesen. Verf. hielt

den Pilz erst für Dematophora necatrix, erkannte aber mit besserem Material,

dass es eine neue Art Rosellinia radieiperda sei. Auf der Tafel ist der neue

Pilz abgebildet. Zur Bekämpfung werden einige Maassregeln vorgeschlagen.

Starbäck, K. Discomyceten-Studien. (Bihang till K. Svenska Vet.

Akad. Handl. XXI. Afd. III. n. 5. 1895.) c. tab. 2.

Im ersten Theile seiner Arbeit theilt Verf. das Resultat seiner Beobachtungen

über die Gewebebildung bei den Discomyceten mit. Ihm ist es hauptsächlich

darum zu thun, für die Systematik feste Bezeichnungen zu schaffen, welche

eindeutig sind und den Charakter des Gewebes ausdrücken. Er begründet

deshalb eine neue Nomenclatur, die Beachtung verdient und hier wiedergegeben

sein mag.

I. Einzelne Hyphen nicht unterscheidbar: kurzzelliges Filzgewebe.

a) Zellen kuglig bis vieleckig, fast isodiametrisch:

kugliges Fg. (textura globulosa);

b) Zellen auf Durchschnitten + rechteckig, nicht isodiam.:

prismatisches Fg. (text. prismatica).

II. Einzelne Hyphen leicht unterscheidbar: langzelliges Filzgewebe.

a) Hyphen in allen Richtungen verlaufend, nicht parallel:

1. Hyphen deutlich getrennt, mit Zwischenräumen:

verflochtenes Fg. (text. intricata),

2. Hyphen mit den Wänden verbunden, ohne Zwischenräume:

epidermoides Fg. (text. epidermoidea);

b) Hyphen in einer Richtung verlaufend und + parallel:

1. Hyphen mit engem Lumen, Wände stark verdickt:

verklebtes Fg. (text. oblita),

2. Hyphen mit weitem Lumen, Wände nicht verdickt, Hyphen locker

verbunden:

langgestrecktes Fg. (text. porrecta).

Der 2. Theil enthält die Beschreibung neuer Arten.

Fink, B. Lichens of Jowa. (Bull. of the Labor. Nat. Hist. State of

Univ. of Jowa III. 1895. n. 3. p. 70.)

Fünfstück, M. Die Fettabscheidungen der Kalkflechten (Nachtrag).

(Fünfstück’s Beitr. z. wissensch. Bot. 1896. I. p. 316.)

Verf. veröffentlicht hier die Nummern der Arnold’schen Exsiccaten, welche

er zu seinen Untersuchungen über die Fettabscheidungen der Kalkflechten

—

Bes Rn

st habe de ee En nn Ba tn ae Pe un a an an „Eee ae 0 a en

(51)

benutzt hat. Zugleich bringt er noch eine Beobachtung, welche deutlich zeigt,

dass die Fettabscheidung nicht mit der Assimilationsthätigkeit in Verbindung

steht. Flechtenthallus nämlich, der dicht am Gletschereis gesammelt war, ent-

hielt nur wenig Gonidien, trotzdem aber nach unten zu Oelzellen und zwar um

so mehr, je tiefer die Hyphen in's Substrat eindrangen. Da die Assimilations-

thätigkeit so nahe am Eise nur gering ist, so kann kaum angenommen werden,

dass die wenigen Gonidien den Thallus ernähren und noch Reservestofle zu

produciren vermögen. Die Fettabscheidung hängt also mit der Abspaltung der

Kohlensäure aus dem Gestein zusammen.

Harvey, F.L. Contributions to the Lichens of Maine Il. (Bull. Torr.

Bot. Club 1896. p. 7.)

Enthält eine Anzahl von Flechten mit ihren Standorten.

Minks, A. Ueber die Protrophie, eine neue Lebensgemeinschaft.

(Oester. Botan. Zeitschr. 1896. p. 50, 88.)

Leider giebt Verf. von seiner neuen Lebensgemeinschaft keine wissen-

schaftliche Definition, so dass vorläufig, ehe nicht Ausführlicheres von ihm

publicirt ist, kein Urtheil über den wissenschaftlichen Werth der Entdeckung

abgegeben werden kann.

Müller, J. Analecta australiensia. (Bull. de ’Herb. Boissier 1896. p. 87.)

Neu sind Calicium obconicum, C. Wilsoni, Stereocaulon ramosum var.

compactum n. v., S. humile, Clathrina aggregata var. pygmaea n. v., Cladonia

squamosa var. pachypoda n. v., Ramalina geniculata var. compacta n. v.,

Ramalea cochleata, Stictina Mougeotiana var. isidiosa n. v., Sticta flavissima

var. simulans n. v., Stictina rigida, Theloschistes chrysophthalmus var. fornicatus

n. v., Parmelia albata, P. tiliacea var. convexula n. v., P. tenuirimis f. isidiosa

n. f., P. conspersa var. strigosa et. var. caespitosa n. v., P. physodes var.

leucina n. v., P. enteroxantha, P. pertransita var. phaeocarpa, P. myriotrema,

Physcia crispa var. linearis n. v., Pannaria nigrata, P. obscura, P. aenea, P.

subimmixta var. redecens n. v., P. myrioloba, Coccocarpia pellita var. meso-

morpha n. v., Thalloidima nitidum, Amphiloma microlobum, Placodium brachy-

lobum, P. imperfectum, Patellaria mycophila, P. verrucosa, P. Frenchiana, P.

melaclinoides, P. Campbelliae, P. leptoplacella, P. superbula, P. modestula, P.

rudis, P. livido-nigrans, Coenogonium ornatum.

Steiner, J. Notiz über einige Flechten von der Adlersruh des Gross-

glockner. (Oester. Botan. Zeitschr. 1896. p. 81.)

7 Arten vom Grossglockner aus einer Höhe von 3463 m.

Zukal, H. Morphologische und biologische Untersuchungen über die

Flechten. Il. (Sitzber. der Kais. Ak. der Wiss. in Wien. Math.

Nat. Cl. CIV. Dec. 1895.)

In dieser 2. Mittheilung setzt Verf. seine biologischen Studien über die

Flechten fort. Zukal behandelt die hier in Frage kommenden Probleme in

äusserst anziehender und geistreicher Weise, die gewiss nicht verfehlen wird,

auch andere Forscher zu ähnlichen Untersuchungen anzuregen,

Der hier gebotene Stoff wird in 6 Kapitel eingetheilt. So interessant es

auch wäre, dem Verf. auf seinem Gedankengang zu folgen, so ist doch eine auch

nur theilweise Wiedergabe seiner Ausführungen nicht möglich, weil die Auswahl

aus der Fülle des gebotenen Stoffes sehr schwer ist. Die Arbeit wird ja auch

(82)

ohnchin bei den Lichenologen gebührende Beachtung finden. Angeführt mögen

die Kapitelüberschriften werden: 1. die Rinde als Schutzmittel vor allzu grossem

Wasserverlust durch die Verdunstung, 2, die Schutzmittel der Flechten wider

die Angriffe der Thiere, 3. die Aufnahme und Fortleitung des Wassers, 4. die

Durchlüftung des Flechtenthallus, 5. das Ernährungs-, Speicherungs- und

Excretionssystem der Flechten, 6. die Flechten vom mechanischen Standpunkt

aus betrachtet.

Hiervon bietet namentlich das letzte Kapitel eine interessante Zusammen-

stellung der bei den Flechten als mechanisch wirkenden Gewebe; manche

bisher eigenthümlich erscheinende anatomische Structur wird hierdurch erklärt

und in's rechte Licht gesetzt.

Aderhold, R. Fusicladium Betulae n. sp. auf den Blättern der Birke.

(Centr. f. Bact. u. Par. 2. Abth. 1896. II. p. 57.)

Der neue Pilz auf Betula-Blättern gehört zu Venturia ditricha f. Betulae.

Bau, A. Ueber ein neues Enzym der Hefe. (Chemikerzeit. XIX.

1895. p. 1873.)

Beach, $. A. Pear Leaf Blight. — Apple and Pear Scab. — Rasp-

berry Anthracnose. (13. Ann. Rep. of the board of control of

the New York Agr. Exp. Stat. Geneva for the year 1894. Albany

1895. p. 573.)

Enthält nur ganz kurze Angaben über die von der Station gegen die

erwähnten Pilzkrankheiten ergriffenen Maassnahmen.

— Treatment of Pear Scab in 1894. (l. c. p. 649.) c. tab. 2.

Enthält die Schilderung der Experimente zur Bekämpfung von Fusicladium

pyrinum.

— Raspberry Anthracnose. (l. c. p. 684.)

Die vorläufigen Versuche ergaben die Vorzüglichkeit der Bordeauxbrühe.

Cavara, F. Ipertrofie ed anomalie nucleari in seguito a parassitismo

vegetale. Pavia 1896. 8 pag. c. tab.

Verf. untersucht die Veränderungen des Kernes in den Wurzelzellen von

Vanilla planifolia bei Angriffen von Pilzen.

Clendenin, Ida. Lasiodiplodia Ell. et Ev. n. gen. (The Botan. Gaz.

1896. p. 92.) c. tab.

L. tubericola EIl. et. Ev. auf Kartoffeln.

Jarius, M. Ascochyta Pisi bei parasitischer und saprophyter Ernährung.

(Bibliotheka Botanika Heft 34. Stuttgart, E. Naegele 1896.) c. tab.

Pr. 9 M.

Das erste Kapitel der Arbeit ist dem Verhalten der Ascochyta Pisi bei para-

sitischer Ernährung gewidmet. Ausgehend von Pykniden des Pilzes auf Erbsen-

früchten schildert Verf. das Wachsthum des Mycels im Innern des Gewebes, sowie

den Bau der Pykniden. Infectionen auf Erbsen waren stets von Erfolg begleitet;

hierbei war es gleich, ob die Sporen den jungen Pllänzchen aufgestrichen oder

mit dem Wasser zugeführt wurden. Schwicriger waren die Infectionen bei

anderen Pflanzen. Verhältnissmässig leicht gelangt der Pilz bei der Wicke,

(53)

schwerer bei der Bohne, noch schwerer bei der Lupine zur Entwickelung,

während die Infection bei anderen Leguminosen und Pflanzen anderer Familien

negative Resultate ergab.

Gleichzeitig wurde auch der Pilz in verschiedenen Nährflüssigkeiten gezüchtet,

um festzustellen, welche Stoffe zu seiner Entwickelung nothwendig sind. In

Decocten verschiedener Art entwickelte sich der Pilz zum Theil bis zur Pykniden-

rcile, der Process der Sporenkeimung, die Mycelverzweigung war nicht in allen

Nährflüssigkeiten absolut gleich, sondern zeigte kleine Unterschiede. Als haupt-

sächlichstes Resultat aus diesen Experimenten ergiebt sich, dass der Pilz auf

Nährstoffen, die proteinreich sind und leicht lösliche Kohlehydrate enthalten,

am besten gedeiht; bei Ueberwiegen der Proteinstoffe gelangen nur die vegetativen

Sporen zur Ausbildung, während die Pyknidenbildung im Gegensatz zur ersten

Kategorie unterbleibt.

Jörgensen, A. Ueber Pilze, welche Uebergangsformen zwischen

Schimmel und Saccharomyceshefe bilden und die in der Brennerei-

würze auftreten. (Centr. f. Bact. u. Par. 2. Abth. 1896. II. p. 44.)

Verf, berichtet über Pilze, die unter gewissen Bedingungen nur Hefe-

vegetation bilden, während bei anderen Culturbedingungen das Schimmelstadium

gleichzeitig mit dem Hefestadium entwickelt wird. Ueber diese eigenthümliche

Vegetation sind weitere Mittheilungen des Verf. zu erwarten,

Liebermann, L. und Bittö, Bela v. Ein Beitrag zur Chemie der

Hefezellen. (Mathemat. und naturwiss. Berichte aus Ungarn, redig.

von Fröhlich. XI. 1894. p. 389.)

Analysen von Hefezellen. Wenn Nucleinsäure mit Wasser oftmals aus-

. gekocht wird, so giebt verdünnte Schwefelsäure keine reducirende Substanz mehr.

Matruchot, L. Developpement d’un Cladobotryum. (Rev. gener. de

Botan. 1895. p. 497.) c. tab.

Culturen mit Cladobotryum ternatum Cda. ergaben, dass dieser Pilz

identisch mit C. gelatinosum Fuck. ist. Zum Entwickelungsgang des C. gela-

tinosum gehört eine Coremienform, welche dem Graphium penicillioides nahe steht.

Nastukoff, A. Essais sur le pouvoir reducteur des levures pures,

moyens de la mesurer. (Ann. de Il’Inst. Pasteur. 1895. p. 766.)

Sorauer, P. Auftreten einer dem amerikanischen „Early blight“ ent-

sprechenden Krankheit an den deutschen Kartoffeln. (Zeitschr. f.

Pflanzenkr. 1896. p. 1.) c. tab.

Verf. beschreibt eine Krankheit des Kartoffelkrautes, die in Ungarn und

später auch in verschiedenen Gegenden Deutschlands constatirt wurde, Das

Blatt zeigt vergilbende, dürr werdende Flecke, die nicht ausbrechen. Als Ursache

erwies sich ein Pilz, der mit dem in Amerika verbreiteten Macrosporium Solani

grosse Achnlichkeit hat. Während aber bei diesem die Sporen mit dem ver-

dünnten Ende dem Sterigma ansitzen, sind sie bei dem hiesigen Pilze mit dem

verdickten Ende angewachsen. Die Identität beider Pilze ist also noch nicht

erwiesen und Verf, schlägt daher für seinen Pilz den Namen Alternaria Solani

vor. Culturversuche auf abgeschnittenen Blättern glückten nur im Zimmer.

Die Keimschläuche drangen zu den Spaltöffnungen ein. Als Namen für die

neue Krankheit schlägt Verf. „Dürrfleckenkrankheit‘ vor.

HHedwigia Ba. XAXAV,. 1890.

Dt a" 2 a dr a Pe Bu una a a m er u Re eat

(54)

Swan, A. P. On the endospore formation and general description of

a red yeast. (Centr. f. Bact. u. Par. 2, Abth. 1896. II. p. 1.) c. fig.

Die vom Verf. untersuchte Rosahefe ist aerobiotisch und lichtempfindlich.

Sie bildet bei Temperaturen zwischen 4,5 und 10° €, reife Sporen.

VI. Moose.

Beckett, T. W.N. On New Zealand Mosses. (Transact. and Proc.

of the New Zealand Instit. 1894. Wellington 1895. p. 403.) c. tab.

Beschreibung von: Blindia tenuifolia H, f. et W. (sub Dicranum), Hedwigia

microcyathea K. Müll., Funaria sphaerocarpa K. Müll., Neckera hymenodonta

K. Müll. (= N. pennata var. tasmanica Hampe).

Brotherus, V. F. Nouvelles contributions A la flore bryologique du

Bresil. (Bihang till K. Svenska. Vet. Ak. Handl. XXI. Afd. II.

n. 3. 1895.)

Die in der Arbeit gegebenen Beiträge zur brasilianischen Moostlora gründen

sich hauptsächlich auf die Sammlungen von Mosen, Puiggari und Glaziou.

Ausser einer grossen Zahl von interessanten Arten sind auch eine Reihe von

neuen beschrieben. Dieselben sind: Campylopus Moseni Broth., C. subarenicolus

K. Müll, C. catumbensis Broth., Leucoloma Moseni Broth., Leucobryum

squarrosulum Broth,, Fissidens substissotheca Broth., F. Regnellii Broth., F.

acicularis K. Müll., F. catumbensis Broth., F. parexilis Broth., F. occultus Broth,,

F. paulensis Broth., F. oediloma K. Müll., F. crenatulus K. Müll,, F. luteo-limbatus

Broth., F. cappilisetus Broth., F, protracticaulis Broth., Eustichia Brotheri Besch,,

Syrrhopodon anomalus Broth., S. vaginans Broth., Hyophila laetevirens Broth,,

H. Moseni Broth., Macromitrium Moseni Broth., Bryum oediloma K. Müll,,

Catharinea Moseni Broth., Lepidopilum Moseni Broth., Hookeria longifrons

K. Müll., H. glareosa Broth., H. chloroleuca Lindb., H, mollicula Broth., H.

limosa Broth., H. irrorata K. Müll., H. spurio-pallida K. Müll., H, perpallida Broth.,

H. Moseni Broth., H. Entodontella K. Müll., H. saprophila K. Müll., Distichophyllum

densirete Broth., Cryphaea Moseni Broth., Prionodon caldensis Broth., Pilotrichella

subpachygasterella Broth., Papillaria Regnellii Broth., P. Moseni Broth., P. perauri-

culata Broth., P. Cardoti Broth., P. paulensis Broth., Neckera brevinervis Broth.,

Rhaphidostegium amnigenum Broth., R. cochleatum Broth., R. subfulvum Broth.,

R. campicolum Broth.; Trichosteleum dicranoides Broth., T. flagelliferum Broth.,

Isopterygium longisetum Broth., Leucomium Moseni Broth., Microthamnium

Aptychella Broth., Entodon Moseni Broth., Stereodon caldensis Broth., Heli-

codontium complanatum Broth., IHypnum julaceum Broth., H. compridense

K. Müll., Amblystegium trinerve Broth., Anomodon scaberrimus Broth., Thuidium

longicuspes Broth., T. caldense Broth.

Brown, R. Notes on New Zealand Mosses: Genus Grimmia.

(Transact. and Proc. of the New Zealand Instit. 1894. XXVIH,

1895. p. 409.) c. tab. 6.

Sect. I. Columella dem Operculum anhängend. Grimmia aquatica, G. Scarellii.

Sect. II, Columella frei vom Operculum. G. revisa, G. saxatilis, G. Mitchelli,

G. cyathiformis, G. Alfredii, G. turbinata, G. argentea, G. Wrightii, G. Laingii,

G. gracilis, G. minime-perichaetalis, G. Novae -Zealandiae, G. tricophylla var.

nigra n. v., G. versabilis, G. finitima, G. rotunda, G. obovata. G. Belli, G. flexi-

folia, G. pusilla, G. diminuta, G. Cockaynei, G. Petriei, G. Stevensii, G. Webbi,

sämmlich neu.

2 Se 5 En SEE neue Bi zus Zar ur aha Ba un. BE ER a Eh nn na ee nn ae nein. re

(55)

Brown, R. Noteson New Zealand Mosses: Genus Orthotrichum. (Transact.

and Proc. of the New Zealand Instit. 1894 XXVII. 1895. p. 422.)

c. tab. 8.

Sect. I. Calyptra behaart. Peristom einfach. Orthotrichum conicorostrum,

fimbriatum, O. reflexum, OÖ latorum.

O. magnothecum.

Sect. III. Calyptra kahl. Peristom einfach. O. cyathiforme, OÖ. acutifolium,

Sect. IV. Calyptra kahl. Peristom doppelt. OÖ. avonense, OÖ. nudum,

OÖ. curvatum, sämmtlich neu.

Campbell, D. H. A new Californian liverwort. (The Botan. Gaz.

1896. p. 9.) c. tab.

Das neu entdeckte Lcebermoos gehört zu den niederen, elaterenlosen

Jungermanniaceen mit thallösem Vegetationskörper. Verf. nennt die sehr aus-

gezeichnete Pflanze Geothallus tuberosus n. gen. et n. Sp.

Correns, C. Berichtigung. (Ber. d. Deutsch. Pot. Ges. 1896. p. 94.)

Verf. berichtigt zu seinem Aufsatz über die Brutkörper von Georgia pellucida

die Bestimmung von Webera annotina in Pleuridium nitidum var. bulbilliferum.

Dismier, E. Contribution aA la flore bryologique des environs de

Paris. (Bull. de la Soc. Bot. de France. 1895. p. 667.)

Standorte einiger seltenen Laubmoose aus der Umgegend von Paris.

Evans, A. W. A note on Jungermannia marchica Nees. (Bull. Torr.

Bot. Club. 1896. p. 12.) ce. tab. 2.

Die Art wurde in Maine und New Jersey nachgewiesen.

Geneau de Lamarliere, L.. Revue de travaux publies sur les Mus-

cindees depuis le 1 Janv. 1889 jusqu’au 1 Janv. 1895. (Rev. gener.

de Botan. 1896. p. 40, 74.)

Joergensen, E. Campylopus brevipes Br. eur. c. fr. (Bergens Museums

Aarbog for 1894—95. n. 17. 1896. p. 1.) c. tab.

Beschreibung der bisher in Norwegen noch nicht gefundenen Kapsel des

Mooses.

— Ueber die Blüthen der Jungermannia orcadensis Hook. (l. c.n. 18.

2: 1). 0

Beschreibung der nur unvollkommen bekannten Blüthen der Pflanze.

Kaalaas, B Scapania gymnostomophila n. sp. (Botan, Notis. 1896,

B. 21.)

Die neue Art wächst an Felsen in Norwegen.

Wi re ie a a 9 Ma are el Aa a

Bd Zu; PR BE Dim

Een al ka aan A a 1 2 BT Bist u an > Blu rn a Zaun an ae

(56)

Kern, F. Contributions & la flore bryologique de la peninsule de

Istrie. (Revue bryol. 1876. p. 34.)

Aufzählung von Laubmoosen.

Kindberg, N. C. New or less known species of acrocarpous mosses

from North America and Europe. (Revue bryol. 1896. p. 17.)

Neben einigen bereits bekannten Arten diagnosticirt Verf, folgende neue:

Dicranum algidum, Drummondia canadensis (= D. clavellata var. canadensis

Kindb.), Oreoweisia obtusata (= O. serrulata var. tenuior Kindb.), Trematodon

acicularis, Grimmia velutina, G. arctophila, G. procera, G. ortholoma, G. Austini,

G. alpina, Racomitrium tenuinerve, R. Palmeri, R. Jenseni, Seligeria tristichoides,

Ceratodon Columbiae, Didymodon subruber, Weisia pusilla, Orthotrichum

Iyelloides, Zygodon crispatus, Cinclidium Macounii, Mnium simplex, Barbula

subcuneifolia, Bryum revelstokense , B. flavescens. Die meisten’ Arten stammen

aus Canada und Grönland, wenige von Norwegen.

Le Jolis, A. Les genres d’Hepatiques de S. F. Gray. (Mem. de la

Soc. Nat. des sc. nat. et math. de Cherbourg XXIX. Paris. 1892.

bis 1895. p. 1.)

Die Arbeit bezweckt die Aufklärung der Gray’schen Genera und führt den

Nachweis, dass viele dieser Namen aus Prioritätsgründen vorzuziehen sind.

— Remarques sur la nomenclature hepaticologique. (l. c. p. 105.)

Antwort auf die Stephanischen Vorschläge betrefis der Nomenclatur der

Lebermoose.

— Remarques sur la nomenclature bryologique. (l. c. p. 228.)

Verf. giebt in der umfangreichen Arbeit eine Uebersicht über diejenigen

Moosnamen, welche nach Gründen der Priorität unhaltbar sind. Ein weiteres

Eingehen auf die grosse Menge der angeführten Thatsachen ist unthunlich.

Paris, E.G. Index bryologicus sive enumeratio muscorum hucusque

cognitorum adjunctis synonymia distributioneque geographica locu-

pletissimis. Pars II. (Paris, P. Klincksieck. 52. Rue des Ecoles. 1896.)

Schon beim Erscheinen des ersten Theiles des Werkes wurde darauf hin-

gewiesen, wie unentbehrlich dasselbe für alle Bryologen sei. Der grosse Fleiss

und die peinliche Sorgfalt, die der Verf. auf die Abfassung dieses wichtigen

Nachschlagebuches verwendet hat, zeigen sich auch im vorliegenden 2, Theile,

Das bereits nach Jahresfrist erlolgte Erscheinen dieses Theiles lässt auf regel-

mässigen Fortgang des Werkes hoffen. Wer das Werk öfter benutzt, der wird

bald zu schätzen wissen, welche empfindliche Lücke durch dasselbe ausgefüllt wird.

Theil II reicht bis Hypnum Grevillei,

Philibert, H. Trichostomum Crozalsi n. sp. (Revue bryol. 1896. p. 10.)

Das Moos stammt aus der Gironde.

-—- Pottia Ryani n. sp. (Revue bryol. 1896. p. 28.)

Von Ryan in Norwegen gesammelt.

Rechin, J. Recoltes bryologiques de la Societe Frangaise de Botanique

pendant sa ression A Ax-les-Thermes (Ariege). (Rev. de Botan.

Bull. mens. de la Soc. Fr. de Botan. 1894. p. 312.)

Eine grosse Zahl von Moosen und einige Flechten genannt.

Da ea" 0

(57)

Schiffner, V. Kritische Bemerkungen über Marchantia Berteroana

Lehm. et Lindenb. und Marchantia tabularis Nees. (Oester. Botan.

Zeitschr. 1896. p. 41, 100.)

Beide genannten Arten erwies die genaue Untersuchung der Original-

exemplare als identisch. Der Name M. Berteroana ist der ältere,

— Wiesnerella, eine neue Gattung der Marchantiaceen. (Oester. Botan.

Zeitschr. 1896. p. 82.) c. tab.

Die neue Gattung stammt aus Java. Ihre Stellung findet sie bei Dumortiera,

wo sie die Kluft zwischen dieser Gattung und Lunularia überbrückt. Die Art

ist W. javanica. “

Slater, B. Dunom de genre Pleurozium Kindb. (Revue bryol. 1896. p. 14.)

Es wird der Vorschlag gemacht, den Kindberg’schen Namen Pleurozium

nicht anzunehmen, da er Anlass zu Verwechslungen mit dem Lebermoosnamen

Pleurozia geben könnte. _ -

— Tortula brevirostris in East Yorkshire. (Journ. of Botany 1896. p. 86.)

Stephani, F. Hepaticae chinenses. (Mem. de la Soc. Nat. des sc.

nat. et math. de Cherbourg. XXIX. Paris 1892 - 95. p. 207.)

Stephani beschreibt die von Delavay in der chinesischen Provinz Yunnan

gesammelten neuen Hepaticae. Die Namen sind bereits in Rev. bryol. 1893. p. 106

veröffentlicht worden. Acrolejeunea cordistipula, Aitonia fissisquama, Aneura

barbiflora, Cincinnulus cordistipulus, Delavayella serfata (n. gen.), Frullania

Delavayi, F. muscicola, F, rotundistipula, F. yunnanensis, Jungermannia erectifolia,

]J.reticulato-papillata, Lepidozia hokinensis, L. macrocalyx, L. robusta, Madotheca

caespitans, M. chinensis, M. densifolia, M. nitens, Marchantia grossibarba, Marsu-

pella Delavayi, Pleuroschisma alpina, P. bidentula, P. cordifolia, Plagiochila

chinensis, P. corticola, P. Delavayi, P. yunnanensis, P. zonata, Scapania secunda,

S. parva, Schisma chinense, S. Delavayi.

Theriot. Notes sur la flore bryologique du Mont-Dore (Revue

bryol. 1896. p. 1, 31.)

Verf. erforschte während einiger Wochen die ausserordentlich interessante

Moosflora des Mont-Dore. Die Gegend ist nicht blos durch Artenreichthum

ausgezeichnet, sondern enthält auch eine grosse Anzahl von Seltenheiten. Zu

einem Theil der Laub- und Lebermoose giebt Verf. genauere Notizen über den

Standort. Am Schluss werden die von ihm beobachteten Arten zusammengestellt.

Underwood, L. M. Notes on our Hepaticae IV. The genus Fossom-

bronia. (The Botan. Gaz. 1896. p. 67.)

Verf. giebt eine kurze Geschichte der amerikanischen Arten der Gattung

und führt sie dann auf. Es sind folgende 10: F. angulosa (Dicks.) Raddi,

F. cristata Lindb., F. cristula Aust., F. foveolata Lindb., F. longiseta Aust.,

F. texana Lindb., F. Wrightii Aust., F. pusilla (L.) Dum., F. salina Lindb,,

F. Macouni Aust. Eine Bestimmungstabelle erleichtert das Erkennen der Arten.

Venturi. L’Orthotrichum anomalum et ses formes affınes. (Revue

bryol. 1896. p. 23.) .

Bemerkungen über den Verwandtschaftskreis der Art und Aufstellung von

OÖ. Duthiei n. sp.

(58)

Voigt, A. Die Laubmoose. (Natur u. Haus 1896. Hf. 7.)

Warnstorf, C. Weitere Beiträge zur Moosflora des Harzes. (Schrift.

des Naturw. Ver. des Harzes in Wernigerode 1895. p. 45.)

Ergänzungen zu einer früheren Arbeit des Verf. über die Moosflora des-

selben Gebietes. Neu für den Harz ist Jungermannia Genthiana Hübn.

V1lI. Pteridophyten.

Ascherson, P. Equisetum heleocharis, maximum und Athyrium

alpestre. (Oesterr. Botan. Zeitschr. 1896. p. 3, 44.)

Nach den Nomenclaturgesetzen hat I. Telmateja E. maximum zu heissen.

Ferner wird Athyrium alpestre gegenüber jüngeren Namen, die mehrere ver-

schiedene Formen zusammenfassen, aufrecht erhalten. Näher auf die interessanten

nomenclatorischen Bemerkungen einzugehen, ist nicht am Platz.

Bazot. litudes de geographie botanique A propos des plantes de la

Cöte-d’Or. (Rev. gener. de Botan. 1895. p. 447.)

Verf, berücksichtigt auch die Verbreitung einiger Pteridophyten.

Beals, A.T. The Ferns of Mount Toby Mass. (Linnean Fern Bullet. IV,

1896. p. 1.)

Colenso, W. A description of two new Ferns and one new Lyco-

podium, lately detected in our New Zealand Forests. (Transact.

and Proc. of the New Zealand Instit. 1894. XXVII. Wellington

1895. p. 399.)

Hemitelia microphylla, Adiantum viridescens, Lycopodium polycephalum.

D’Aymeric, A.M.ct H.M. Le Subularia aquatica, les Isoetes Brochoni

et lacustris dans les lacs du bassin de la Haute-triöge et du bassin

limitrophe de Lanoux (Pyr.-Or.). (Rev. de Botan. Bull. mens. de

la Soc. fr. de Botan. 1894, p. 302.)

Field, H. C. On the growth of Ferns; and on a new Fern now first

reported. (Transact. and Proc. of the New Zealand Inst. 1894.

XXVII 1895. p. 446.)

Verf. macht Mittheilungen über einen wahrscheinlich neuen Farn, dessen

Erhaltungszustand aber nicht die sichere Bestimmung der Gattung zulässt,

Besser wäre demnach gewesen, nichts darüber zu schreiben.

Haläcsy, E. v. Beitrag zur Flora von Griechenland. (Oesterr. Botan.

Zeitschr. 1896. p. 11.) Schluss.

Ein Farn genannt.

Le Grand, A. I'Isoetes adspersa Br. doit-il &tre ray& de la Flore de

France? (Bull. de la Soc. Not. de France. 1895. p. 623.)

Notiz über die Verbreitung der Art in Frankreich.

Lowe, E.J. Fern-growing. London. (J. C. Nimmo.) 1896. Pr. 12 sh. 6 d.

(59)

Mac Millan, C. Current problems in plant morphology I. The question

of Pteridophyte phylogeny. (Science 2. ser. II. 1895. p. 183.)

Meehan, T. Aspidium marginale. (Meehan’s Monthly. V. 1895. p. 89.)

—— Lygodium palmatum. (Meehan’s Monthly. V. 1895. p. 181.) c. tab.

Olsson, P. Växtlokaler för nya eller sällsynta växter i Norrland.

(Botan. Notiser 1896. p. 36.)

Am Schluss mehrere Pteridophyten genannt.

Richter, A. Pteridographische Mittheilungen, hauptsächlich zur Kennt-

niss der Flora von Ungarn. (Termeszetrajzi Füzetek. XIX. 1896.

p. 80, 113.)

Schorler, B. Bereicherungen der Flora saxonica im Jahre 1894.

(Sitzber. und Abhandl. der Naturw. Ges. Isis. Jahrg. 1894. p. 61.

1895.)

Einige Pteridophyten genannt.

Stenzel, G. Nachträgliche Bemerkungen zur Gattung Tubicaulis

Cotta. (Botan. Zeitschr. 1896. p. 27.)

Waters, C. EE An analytical key for our local Ferns based on the

stipes. (Johns Hopkins Univ. Circul. XIV. 1895. p. 74.)

Williamson, W. C. and Scott, D. H. Further observations on the organi-

zation of the fossil plants of the Coal-Measures II. The roots of

Calamites. (Philos. Transact. of the Roy. Soc. of London vol. 186.

” 1895. p. 683.) c. tab. 3.

Das unter dem Namen Astromyelon Williamsonis beschriebene Fossil stellt

die Adventivwurzeln von Calamites dar.

Wilson, F. Asplenium eburneum. (The Asa Gray Bulletin IV.

1896. p. 11.)

Sammlungen.

Aliescher, A. und Schnabl, J. N. Fungi Bavarici exsiccati. 5. Cen-

turie. München 1895.

Gleich den vorhergehenden Centurien (vergl. Hedwigia 1890 Heft 6. 1891

S. 88, 1893 S. 245 und 1894 S. (167) ist auch diese Centurie von den Verfassern

mit gewohnter Sorgfalt zusammengestellt. Sie enthält wiederum eine Reihe neuer

oder seltener Formen, namentlich aus den Fungi imperfecti. Manche Arten

sind durch ihre Wirthspflanze interessant, manche durch ihr Auftreten in Bayern.

Von manchen Pilzen sind interessante Fruchtformen ausgegeben. Sämmtliche

Arten sind dem neuesten Standpunkte der Wissenschaft gemäss bezeichnet uni

die wichtigsten oder verbreitetsten Synonyme angeführt, häufig sind auch

wissenschaftliche Bemerkungen und Jiterarische Hinweise gegeben. Die Exem-

plare sind ausgewählt und reichlich; die Ausstattung ist wieder sehr gut. Von

den Nummern will ich hier nur die interessanteren noch besonders hervorheben.

Puceinia Galii (Pers.) Wint. auf Asperula cynanchica; Puccinia coronifera

Klebahn auf Lolium perenne; Phragmidium carbonarium (Schlchtd.) Wint. auf

El a er

le: KR |

a a a

(60)

Sanguisorba officinalis; von Melampsora Galii (L.k.) Wint. eine neue Forma

Asperulae odoratae Allescher auf Asperula odorata (möchte vielleicht eine neue

Art sein. Ref.); das schöne Aecidium der Melampsora Goeppertiana (Kühn)

(nicht Kuhn, wie auf der Etiquette gedruckt ist) Wint. auf Abies alba Mill.;

der unter dem Namen Polyporus annosus Fr. bekannte Pilz wird hier unter

dem Namen Polyporus scutatus C. O. Harz, weil er mit der alten Poria scutata

Hoffm. identisch sei, aus dem Bergwerke Hausham ausgegeben; Phyllactinia

suffulta auf Carpinus Betulus; Pharcidia epieymatia (Wallr.) Wint. auf Lecanora

subfusca; Ophiobolus porphyrogonus (Tode) Sacc.,; Hypospila bifrons (DC.) Sacc.

auf abgefallenen Eichenblättern; Dothidea Sambucei (Pers.) Fr. auf Acer Pseudo-

platanus; die Spermogonien von Phacidium repandum (Alb. et Schw.) Fr. auf

Asperula odorata,; Elaphomyces granulatus Fr., Phoma depressum (Lev.) Sacc.

auf den Fruchtkapseln von Syringa vulgaris; Phoma canadensis All. nov. sp. mit

Diagnose, das dem Phoma nebulosum (Pers.) Mont. nahesteht,; Asteroma Capreae

Dsm. auf Salix fragilis; Sphaeropsis Visci (Sollm.) Sacc. auf Viscum album;

Rhabdospora pleosporoides Sacc. an Solidago virgaurea; Rhabdospora Galeo-

psidis Allescher nov. sp. mit Diagıose auf Galeopsis Tetrahit; Sporonema stro-

bilinum Desm. var. microsporum Allescher mit Diagnose auf den Zapfenschuppen

von Abies excelsa; Gloeosporium Syringae Allescher auf Blättern von Syringa

vulgaris; Cylindrosporium Tubeufianum Allescher auf noch unreifen Früchten von

Prunus Padus; das aus Nordamerika bekannt gewordene Myxosporium Ellisii Sacc.!)

auf Populus nigra; Myxosporium carneum Lib. #. sticticum Karst. auf Fraxinus

excelsior; Myxosporium diplodioides Allescher nov. sp. mit Diagnose auf todten

Zweigen von Sorbus Aria; Myxosporium Rhamni Ällescher auf Rhamnus Fran-

gula; Nemaspora Alni Allescher an berindeten Zweigen von Alnus incana;

Septogloeum saliciperdum Allescher et Tubeuf nov. sp. mit Diagnose auf welken

Zweigen und Blättern von Salix laurina; Ovularia alpina €. Mass. auf Alchemilla

alpina; Ramularia anserina Allescher nov. sp. mit Diagnose auf lebenden

Blättern von Potentilla anserina,; Cercosporella Primulae Allescher auf Primula

elatiora; Cercospora rosicola Pers. auf Rosa arvensis und Dictyosporium ele-

gans Cda. auf Salix incana.

Ich habe, wie gesagt, nur die mir interessanter erschienenen Namen hervor-

gehoben,

Gesammelt haben die Nummern ausser den Herausgebern namentlich noch

Herr Fritz Rohnfelder; einzelne Nummern haben auch die Herren Prof. Dr. C.

OÖ. Harz, Dr. Rehm und Dr. v. Tubeut geliefert.

Ich kann die Sammlung nur wiederum jedem Freunde der Pilzkunde auf's

Wärmste anempfehlen. P. Magnus.

Sydow. Mykotheca Marchica Centur. 45. — No. 4401 — 4500.

Januar 1896.

1. Flammula alnicola Fr.; 2. Omphalia leucophylla Fr.; 3. Cantharellus cine-

reus (Pers.) Fr.; 4. Clavaria juncea Fr.; 5. Cl.? Sydowii Bres. n. sp.; 6. Corticium

ciliatum Fr.; 7. C. comedens Nees; 8. C. confluens F'r.; 9. C. gilvescens Bres.

t) Nach Saccardo Sylloge Fungorum III. S. 724 ist dieser Pilz zuerst von Ellis

als Melanconium hyalinum in Torrey Botanical Club Vol.Xn. 11 p.135 beschrieben

worden. Was Saccardo dazu berechtigte, die Speciesbezeichnung hyalinum am-

zuändern, ist mir unverständlich, da es nach Saccardo Syll. Fung. III weder

ein anderes Melanconium hyalinum, noch” Myxosporium hyalinum giebt. Der

Pilz muss daher den Namen Myxosporium hyalinum (Ellis) führen, unter welchem

Namen ihn auch E. W. D. Holway in Rabenhorst-Winter Fungi Europaci

No. 3479 ausgegeben hat.

(61)

n. sp.; 10. C. leve Pers.; 11. C. nudum Pers.; 12. C. quercinum Pers.; 13. St.

gausopatum Fr.; 14. St. tabacinum (Sow.) Fr.; 15. Hypochnus capnoides Bres.

n. sp.; 16. Poria vulgaris Fr.; 17. Hydnum argutum Fr.; 18. Trametes odorata

(Wulf) Fr.; 19. Thelephora? cristata Pers.; 20. Th. laciniata Pers. f. tenuior;

21. Saccharomyces glutinis Fres.; 22. Nectria cinnabarina Tode; 23. Sphaerella

Rhododendri Cooke; 24. Valsa salicina (Pers.) f. octospora; 25. Diaporthe Poly-

soni Rehm n. sp.; 26. Leptosphaeria apogon Sacc.; 27. Leptosph. culmicola

(Fr.) Auersw.; 28. Metasphaeria Funckiae Bres. n. sp.; 29. Ophiobolus pachy-

rogenus (Tode); 30. Ditopella fusispora De Not.; 31. Dermatea Cerasi (Pers.)

De Not.; 32. Hypopsila bifrons (DC.) Sacc.; 33. Pyrenopeziza compressula Rehm

n. sp.; 34. Phialea Solani Pers. f. Chenopodii; 35. Mollisia minutila Sacc.;

36. Helotium conformatum Karst.; 37 u. 38. Helotium phyllophilum Desm.,

Alnus u. Populus; 39. Rhizopus nigricans Ehrb.; 40. Pestalozzia tenera Desm.;

41. P. Guepini Desm.; 42. Hainesia? Rubi (West.) Sacc.; 43. Heterosporium gra-

cile (Wallr.); Sacc.; 44. Actinonema Rosae Fr.; 45. Coniothyrium fuscidulum

Sacc.; 46. C. olympicum All. n. sp.; 47. Asteroma Lonicerae Dum.; 48. Asco-

chyta Doronici All. n. sp.; 49. A. evonymicola All. n. sp.; 50. Gloeosporium

Aquilegiae Thüm.; 51. Dothiorella Myricariae Cooke et Mass. f. germanica All.;

52. Rhabdospora Hypochaeridis All. n. sp.; 53. Rh. Tunicae Sacc.; 54. Pyreno-

chaete Rivini All. n. sp.; 55. Leptostroma virgultosum Sacc. f. Clematidis All.;

56. Pleospora Sydowiana All. n. sp.; 57. Septoria aggregata Sacc.; 58. S. Bidentis

Sacc.; 59. S. Cercidis Fr.; 60. S. Inulae Sacc. et Speg. c. Phyllosticta Inulae All.;

61. Septoria Lychnitis Desm n. f.; 62. S. Paeoniae West., 69. L. Rubi West.;

64. Phyllosticta Allescheri P. Syd. n. sp.; 65. Ph. argyrea Speg.; 66. Ph. ariae-

foliae All. n. sp.; 67. Ph. Berberidis Rab.; 68. Ph. carpathica All. n. sp.; 69. Ph.

Chionanthi Thüm.; 70. Ph. cydoniicola All. n. sp.; 71. Ph. Ericae All. n. sp.;

72. Ph. fallax All. n. sp.; 73. Ph. Hieracii All. n. sp.; 74. Ph. intermedia All.

n. sp.; 75. Ph. Inulae All, n. sp.; 76. Ph. Linocieri Thüm.; 77. Ph. Lycii EIl. et

Kell.; 78. Ph. Pentastemonis Cooke f. major All.; 79. Ph. Plantaginis Sacc.;

80. Ph. Quercus Sacc. et Sp.; 81. Ph. Ruborum Sacc.; 82. Ph. Späthiana All. et

Syd. n. sp.; 83. Ph. Cotoneastri All. n. sp.; 84. Vermicularia Liliacearum West.;

85. V. herbarum West. f. Armoraciae All.; 86. V. Späthiana All. n. sp.; 87. Sporo-

desmium Sydowianum All. n. sp.; 88. Gloeosporium Equiseti E. et E.; 89. Phoma

Corni Fuck.; 90. Ph. Equiseti Desm.; 91. Ph. Armoraciae All. n. sp.,; 92. Ph.

juncicola Br.; 93. Ph. Liliacearum West.; 94. Ph. sambucina Sacc.; 95. Diplodia

Passeriniana Thüm.; 96. D. Thuyae West.; 97. Cytospora Elaeagni All. n. sp.;

98. Cladosporium Idesiae Bres.; 99. Botrytis vulgaris Fr.; 100. Sclerotium trun-

corum Rabh.?

Diagnosen der neuen Arten.

No. 4405. Clavaria Sydowii Bres. n. sp.

Caespitosa, minima; caespituli 2—3 mm alti, dilute carnei; clavae filiformes,

apice attenuatae, laeves, ubique summo apice excepto, fertiles; sporae obovato-

elongatae, hyalinae, 9—10 — 5--51/, «u; basidia clavata, 24—26 — du, hyphae 4 u latae.

Hab. ad ramulos Robiniae pseudacaciae, Muskau, O. L, Bergpark.

No. 4409. Corticium gilvescens Bres. n. sp.

Receptaculum effusum, adglutinatum, ceraceo-molle, ex albo isabellinum,

ambitu pruinato-radiato, mox similare; hymenium laeve glabrum, sicco

rimosum; sporae hyalinae, subglobosae vel ellipsoideae, 9—10 = 7—8 u; basidia

clavata, 60—65 — 10—12 «; hyphae tenues, noduloso-septatae, 21/—4 u latae.

Hab. ad ramos Spiraeae sp. Wilmersdorf bei Berlin.

Corticio bombycino Somm. affıne, a quo hymenio crassiore, ceraceo,

basidiis longioribus et hyphis strictioribus praecipue distinctum.

Hedwigia Ba, XXXV, 1896. 6

e”

a I nn Ze TEE lie a de | u

(62)

No. 4415. Hypochnus capnoides Bres. n. sp.

Effusus, adnatus, mollis, tomentosus, subpulverulento-granulosus, fumoso-

umbrinus, ambitu pallidiore, canescente,; sporae sphaeroideae, luteo-fuscae,

aculeatae, 6—7 — 6 u; basidia clavata, 35—40 = 6-8 u; hyphae subhyalinae

vel rarius luteolae, nodoso -septatae, 3—6 u latae.

Hab. in culmis Phragmitis com., Berlin, Wanseeufer.

No. 4428. Metasphaeria Funckiae Bres. n. sp.

Peritheciis sparsis, globoso-obovatis, epidermide tectis, apice erumpentibus,

contextu fuligineoatro, parenchymatico, !/; mm latis; ascis clavatis, deorsum

attenuatis breviterque stipitatis, 8sporis, 100—140 = 12—15 «; paraphysibus

numerosis, ramosis, filiformibus, 1'/, « latis; sporidiis distichis, hyalinis, 8&—12 u

latis, ad septa leniter constrictis, subfusoideis vel subclavatis, 24—30 — 7-9 M.

No. 4498. Cladosporium Idesiae Bres. n. sp.

Caespitulis minimis, punctiformibus, dense gregariis, epiphyllis, fuscis

ex maculis subrotundis vel irregularibus, canescentibus fusciduloque marginatis

oriundis; hyphis simplicibus, fasciculatis, crebre septatis, luteis, 160—230 = 6—7 u;

conidiis obovatis vel elliptieis, 1—3 septatis, minute asperulis, luteis, 16—26 —

10—13 u., haud vel vix constrictis.

Hab. ad folia Idesiae sp., Berlin, Späth’sche Baumschule.

Die neuen Arten von Allescher werden später in der Hedwigia mit Diagnosen

veröffentlicht werden.

Personalnotisen.

Die französische Akademie der Wissenschaften hat den Preis

Desmazieres verliehen an Prof. Borzi (Palermo) für seine „Studi

algologici“; den Preis La Fons-Melicocq an Geneau de Lamarliere

für seine „Distribution geographique des Cryptogames supcrieures

dans le nord de la France“; den Preis Montagne an F. Renauld für

seinen „Prodrome de la flore bryologique de Madagaskar, des Mas-

careignes et des Comores“; den Preis Tr&mont an B. Renault wegen

seiner Untersuchungen über fossile Pflanzen.

Josef Brunnthaler beabsichtigt, eine kryptogamische Tausch-

anstalt zu begründen, und versendet hierzu Prospecte mit den Be-

dingungen und Statuten. Interessenten mögen sich direct an ihn

wenden: Wien IV, Wiedner Hauptstrasse 91.

’

Dr. P. Voglino wurde Privatdocent an der Universität zu Turin.

Dr. A. N. Buscalioni wurde Assistent am pflanzenphysiologischen

Institut zu Göttingen.

Prof. Dr. C. A. J. A. Oudemans hat in Rücksicht auf sein hohes

Alter die Professur in Amsterdam niedergelegt.

Dr. P. A. Karsten habilitirte sich an der Universität Kiel.

ie.

(63)

Öberförster Dr. A. Möller wurde von Idstein nach Neustadt-

Eberswalde versetzt.

Prof. G. F. Atkinson wurde Professor der Botanik an der Cornell-

Universität zu Ithaca, N. Y., nachdem Prof. A. N. Prentiss abgedankt.

Dr. W. W. Rowlee wurde Assistent - Professor, Dr. E. J. Durand

Instructor der Botanik und K. M. Wiegand Assistent an derselben

Universität.

Anzeigen.

Bibliotheque botanique — MM. J.-B. Bailliere et fils,

libraires, 19, rue Hautefeuille, a Paris, proc&deront, les 7 et 8 mai 1896,

a la vente de la belle Bibliotheque laissee par M. P. Durand. Cette

Bibliotheque comprend 500 numeros: les parties les plus interessantes

sont les Journaux et Societes savantes, les /conographies, les Cryptogames,

les Flores et la Botanıque applıquce.

Ce catalogue sera adresse gratis A tout lecteur de ce journal qui

en fera la demande a MM. ].-B. Bailliere et fils.

Von dem Unterzeichneten sowie durch jede Buchhandlung

des In- und Auslandes ist zu beziehen:

Die Laubmoose

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Grossherzogthums Baden

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Wilh. Baur

Apotheker in Ichenheim.

Sonderabdruck aus „Mittheilungen des Badischen Botanischen Vereins“.

Jahrgang 1894.

80 Seiten 8°. Preis Mark 1,60.

Dresden-N. C. Heinrich

Verlagshandlung,

Bu und niet 5 u nn 3 dann arts _ Seen an nn

(64)

le a uU r in allen ihren Gebieten werden

® besonders hingewiesen auf die

seit 1852 erscheinende natur-

wissenschaftliche Wochenschrift „Die Natur“, Zeitung zur Verbreitung

naturwissenschaftl. Kenntniss und Naturanschauung für Leser aller Stände

(Organ des Deutschen Humboldt-Vereins). Herausgegeben von Professor

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Privatdocent der Botanik an der Universität Berlin.

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Dresden-N., 1896. C. Heinrich

Verlagshandlung.

Redaction: Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von Paul Hennings und Dr. @, Lindau in Berlin.

Druck und Verlag von (. Heinrich in Dresden.

Repertorium

kryptogamische Literatur

Beiblatt zur „Hedwigia“,

Band XXXV. Mai Juni 1896. Nr. 3.

I. Allgemeines und Vermischtes.

Ascherson, P. M. Kuhn. (Verhandl. d. Bot. Ver. d. Prov. Brand.

1895. p. LXIV.)

Batters, E.EA. Thomas Hughes Buffham. (Journ. of Botany 1896.

p. 170.)

De Toni, G. Be Thomas Hughes Buffham. (Journ. of the Quekett

Microsc. Club. 2. ser. VI. 1896. p. 210.)

Devaux. Physiologie des organismes unicellulaires. Limoges (Du-

courtieux) 1895.

Dörfler, J. Botaniker- Adressbuch. Wien 1896 (Burichgasse 36).

Im Selbstverlag des Herausgebers. Preis gebunden 10 M.

Das vorliegende Botaniker-Adressbuch bietet 6455 Adressen von Botanikern

aller Länder. Es enthält die wissenschaftlichen Institute, Zeitschriiten, Gesell-

schaften, Gärten etc. der ganzen Erde. Neben dieser Reichhaltigkeit des In-

haltes ist die Zuverlässigkeit hervorzuheben, die in den Angaben herrscht.

Das Adressbuch wird bald allen Botanikern unentbehrlich werden; es sei allen

Fachgenossen hiermit angelegentlichst empfohlen,

Frank, A. B. Die Krankheiten der Pflanzen. Bd. I— III. 1895—-96.

2. Aufl. Breslau (E. Trewendt). Pr. 22 M.

Die neue Auflage des bekannten Handbuches hat sich wesentlich vermehrt

und verbessert. Die neueren Forschungen über Pflanzenkrankheiten sind zum

grössten Theil berücksichtigt, wenn auch leider nicht immer nach der Original-

veröffentlichung. Der 1. Band behandelt die durch anorganische Einflüsse er-

zeugten Krankheiten, der 2. die durch Pflanzen, der 3. die durch Thiere hervor-

gerufenen Erkrankungen. Der wichtigste 2. Band enthält hauptsächlich die

durch Pilze verursachten Krankheiten. Verf. führt hier die einheimischen und

europäischen Krankheiten vollständig auf, die tropischen nur soweit, als sie

Kulturpflanzen befallen. Ein Wort, um das Buch zu empfehlen, ist unnöthig,

da ja doch Jeder, der sich mit Pflanzenkrankheiten beschäftigt, dasselbe benutzen

und studiren muss. Dem Texte sind Holzschnitte eingefügt, die aber nur zum

geringen Theil den Anforderungen, welche die heutige Zeit an Abbildungen

stellt, entsprechen.

Linton, E. F. and Linton, W. R. Westmeath Plants. (Journ. of

Botany 1896. p. 119.)

Es werden auch einige Farne und eine Chara genannt.

Hedwigia Bd, XXXV. 18906. 7

er at m 00

Be 2 a ed Ka Fa al ae a a un ya ne a u ey inet ua he ana den aut iz Due m le nee ran nn Se Si en rn ad zu aan a a Ar a al a a Fe ee

(66)

Pax, F. Prantl's Lehrbuch der Botanik. 10. Aufl. 406 pag. Mit

387 Fig. 1896. Leipzig (W. Engelmann). Pr. 4 M.

Das weitverbreitete Lehrbuch bedarf kaum noch einer Empfehlung. Die

bereits nach kaum 2 Jahren nöthig gewordene neue Auflage spricht für die

Vortrefflichkeit des Buches auch im jetzigen Gewande. Die Zahl der Abbildungen

ist vermehrt, der Abschnitt über Kryptogamen ist wesentlich erweitert worden.

Saccardo, Dom. Le piante spontanee nel regio orto botanico di

Padova. (Atti della Soc. Venet.-Trent. di Scienze Natur. 2 ser.

vol. II. fasc. II. 1896.) c. tab.

Die Arbeit bringt eine Aufzählung sämmtlicher bisher im botanischen

Garten zu Padua wild beobachteten Pllanzen. Ausser der geringen Menge von

Phanerogamen sind fast die doppelte Anzahl von Kryptogamen aufgeführt. Den

Haupttheil derselben bilden die Pilze, von denen eine Anzahl neuer Arten be-

schrieben wird.

Schiffner, V. Cryptogamae Karoanae Dahuricae. (Oesterr, botan.,

Zeitschr. 1896. p. 137.)

Aufzählung einiger von Karo in Dahurien gesammelter Kryptogamen,

darunter 1 Selaginella, 9 Laubmoose, 2 Pilze und 1 Flechte.

Tonduz, A. Herborisations au Costa-Rica. (Bull. de l’Herb. Boiss.

1896. p. 163.)

Näher besprochen wird die Flora des Bassins von Diquis. Bei den Auf-

zählungen der Florenbestandtheile einzelner Lokalitäten sind auch die Krypto-

gamen mit berücksichtigt.

ll. Myxomyceten.

Lister, A. A new variety of Enteridium olivaceum. (Journ. of

Botany 1896. p. 210.) N. A.

Schilberszky, C. Neuere Beiträge zur Morphologie und Systematik

der Myxomyceten. (Bot. Centralbl. LXVI. 1896. p. 81.) c. tab.

Verf, giebt eine Uebersicht über die Arten von Cribraria. Abgetrennt

wird C. mirabilis als Dietydium mirabile. Als neu wird Physarum mucoroides

beschrieben.

Ill. Schizophyten.

Arthur, J. C. and Bolley, H. L. Bacteriosis of Carnations. (Purdue

Univ. Agric. Exp. Stat. Bull. n. 59. März 1896.) c. tab. 8.

Die Verff. untersuchen eine weitverbreitete Krankheit der Nelken (Carnations)

näher und weisen überzeugend nach, dass dieselbe sich auf Bacterien zurückführt.

Es ist gelungen, das Bacterium Dianthi n. sp. zu isoliren und damit erfolgreiche

Impfungen auszuführen. Ohne auf Einzelheiten einzugehen, sei von der Zu-

sammenfassung am Schluss das Wichtigste hervorgehoben.

Die Krankheit hat ihren Sitz in den Blättern und beeinflusst das Wachs-

thum der gesammten Pflanze, insbesondere die Bildung der Blüthen. Die Ursache

der Krankheit ist ein Bacterium, das zu den Spaltöffnungen oder zufälligen

Oeffnungen im Blatt eindringt. Das Bacterium kann isolirt und erfolgreich zu

Impfungen benutzt werden. Die Krankheit ergreift nicht alle Nelkenvarietäten

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(67)

in gleichem Maasse, besonders haben schwache Individuen zu leiden; andere

Pflanzen wie Nelken sind immun. Um die Krankheit zu verhüten, ist es noth-

wendig, das Laubwerk trocken zu halten und die Aphiden, welche Löcher

bohren könnten, zu entfernen. Es müssen deshalb besondere Bewässerungs-

vorrichtungen der Wurzeln getroffen werden und durch Drahtnetze die Blätter

vom Boden entfernt gehalten werden. Besprengungen von oben sollen nur an

warmen Tagen geschehen und mit Wasser, dem eine geringe Quantität ammoniaka-

lischer Kupfercarbonatlösung zugesetzt worden ist.

Baumgarten, P. v. u. Roloff, F. Jahresbericht über die Fortschritte

in der Lehre von den pathogenen Mikroorganismen, umfassend

Bacterien, Pilze und Protozoen IX. 1893. Abth. 2. Braunschweig

(H. Bruhn) 1896. Pr. 13 M.

Behrens, J. Die Infektionskrankheiten des Weins. Sammelref.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 213.)

Bennett, A. A. and Pammel, E. E.E An study of some gas-producing

bacteria. (The Journ. of the Americ, chemic. soc. XVIII. 1896.

p. 157.)

Biel, W. Ueber einen schwarzes Pigment bildenden Kartoffelbacillus.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 137.)

Bolley, H. L. The constancy of Bacterial species in normal fore milk.

(The American Naturalist 1896. p. 184.)

‘Burri, R. u. Stutzer, A. Zur Frage der Nitrification im Erdboden.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. 1896. II. p. 105, 196.) c. tab.

Dyar, H. G&. On certain Bacteria from the air of New York City.

(Ann. of New York Ac. of Sc. VIII. 1895. p. 322.)

Engler-Prantl. Die natürlichen Pftanzenfamilien. Schizomycetes von

W. Migula. Lief. 129. 1896.

Der Verf. liefert hier eine treffliche Zusammenfassung der wichtigen Gruppe

der Bacterien. In der Einleitung bringt er die allgemeinen Verhältnisse dieser

Organismen, wobei er die morphologischen Merkmale ganz besonders in Betracht

zieht. Auch die biologischen und pathologischen Eigenschaften werden in der

Kürze behandelt. Der Schwerpunkt der Arbeit liegt in der Systematik. Migula

bringt hier sein bereits früher veröffentlichtes System (vgl. dazu Hedwigia 1895.

p- [44]) zur consequenten Anwendung. Viele bekannte Arten wechseln in-

folgedessen die Gattung und damit die Benennung. Als Einleitung in die

Bacteriologie empfiehlt sich das Studium dieser Arbeit ganz besonders. Zu

bemerken wäre noch, dass der Name Cladothrix Cohn der älteren Amarantaceen-

gattung weichen muss; eintreten müsste dafür der Name Cohnidonum O. Ktze.

Frank, 6. Die Bedeutung der Bacterien im Haushalte der Natur.

(Jahrb. des Nassauischen Vereins f. Naturkunde 1896.) Separat.

Wiesbaden (Bergmann). Preis 0,60 M.

Lortet, L. Influence des courants induits sur l’orientation des Bac-

teries vivantes. (Compt. rend. CXXII. 1896. p. 892.)

(68)

Migula, W. Ueber sogenannte Kapselbildung bei Bacterien. (Dtsche

thierärztl. Wochenschr. 1896. p. 28.)

Roze, E. Sur des Bacteriacees de la Pomme de terre. (Bull. de la

Soc. Myc. de Fr. 1896. p. 55.)

Verf. züchtete aus schorfkranken Kartoffeln (Potato Scab, Krätze, Piqudes)

einen neuen Pilz Micrococcus Nuclei, der die Krankheit erregen soll. Aus

anderen Sorten züchtete er weitere Bacterien Microc. Imperatoris und flavidus.

Die Resultate sind noch unsicher, da die Infectionen nicht immer gelangen.

— Sur deux nouvelles Bacteriacces de la Pomme de terre. (Compt.

rend. CXXIL. 1896. p. 750.)

Micrococcus flavidus und albidus.

Schirokikh, J. Ueber einen neuen Salpeter zerstörenden Bacillus.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 204.)

Setchell, W. A. Ocillatoria trapezoidea Tilden. (Erythea 1896,

p. 69.)

Wakker, J. H. Die indirecte Bekämpfung der Serehkrankheit des

Zuckerrohrs auf Java. (Bot. Centralbl. 1896. LXVI. p. 1.)

Zur Verhütung der Serehkrankheit wird empfohlen: Cultur von guten

Varietäten, die weniger empfänglich sind, als das Cheribenrohr; Cultur der

Abkömmlinge der Samenpflanze,; Verbesserung des Rohres durch sorgfältige

Zuchtwahl; Bezug des Pllanzenmaterials aus eigenen Stecklingsschulen.

Weigmann, H Ueber den jetzigen Stand der bacteriologischen

Forschung auf dem Gebiete des Käsereifungsprocesses. (Centralbl.

f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 150, 207.)

IV. Algen.

Arcangeli, G Sopra due fossili d’ Jano. (Bull. della Soc. Bot. Ital.

1896, p. 65.)

Daubreeia Biondiana u. Spirophyton Jani

De Wildeman, E. Notes algologiques. (Notarisia 1895. p. 49.) c. tab.

I. Pediastrum tricornutum Borge hat Verf. genauer untersucht und die

Zusammensetzung und Grösse der Coenobien festgestellt. Die Diagnose der

Art wird dadurch wesentlich ergänzt.

2. Borzi hatte Ophioeytium und Sciadium zusammengezogen und 5 Arten

Wildeman möchte die Anzahl der Arten noch mehr reduciren, bis auf 3 unter

Wegfall von maximum und gracillimum. Vielleicht, so meint er, muss überhaupt

nur eine Art, die schr variabel ist, festgehalten werden.

3. Mittheilungen über die Zelltheilung bei einer Art von Melosira.

Drevs, P. Die Regulation des osmotischen Druckes in Meeresalgen

bei Schwankungen des Salzgehaltes im Aussenmedium. Inaug.

Diss. Güstrow (Opitz & Co.) 1896, 46 pag. Ir. IM.

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(69)

Hansen, C. 0. Planteorganismerne i Ferskvandsplankton fra Jylland.

(Vidensk. Medded. fra den naturh. Foren. Kopenhagen 1895.

p. 198.) c. fig.

Bearbeitung einer Sammlung von Algen von der jütländischen Küste,

hauptsächlich Planktonformen. Es wurden Cyanophyceen, Diatomeen und Grün-

algen gefunden, neu ist Anabaena stricta.

Lemmermann, E. Zweiter Beitrag zur Algenflora des Plöner Seen-

gebietes. (Forschungsber. a. der biol. Stat. zu Plön 1896. IV.

p. 134.) c. fig.

Eine erneute Durchforschung der Algentlora des Plöner Seengebietes führte

zur Feststellung einer grossen Zahl bisher unbekannter oder dort noch nicht

beobachteter Formen. Die Zahl der Arten erhöht sich auf 345.

In der Einleitung theilt Vert. eine Reihe von Beobachtungen über die

Flora von salzhaltigen Tümpeln mit. Die eigentliche Aufzählung enthält 221

Arten, darunter folgende neue: Prorocentrum ovoideum, Ophiocytium cochleare

(Eichw.) A. Br. var. bicuspidatum Borge f. longispina, Cosmarium emarginato-

constrictum, Micrasterias rotata (Grev.)Ralfs var. pulchra, Tolypothrix polymorpha,

Sphaerozyga cylindrica.

Es ist ein entschieden verdienstvolles Unternehmen des Verf., die heimische

Algenflora in so eingehender Weise zu studiren. Wir gelangen dadurch all-

mählich in den Stand, uns ein Bild der Verbreitung der Süsswasseralgen zu

machen, ein Unternehmen, das nach den wenigen bisher vorliegenden Studien

vor der Hand noch in weitem Felde liegt.

Molisch, H. Die Ernährung der Süsswasseralgen. (Verhandl. der

Ges. Deutsch. Naturf. u. Aerzte. 67. Vers. zu Lübeck 1895. p. 100.)

Die grünen Algen brauchen zu ihrer Ernährung dieselben Elemente, wie

die höheren Pflanzen. Nur bezüglich des Calciums ergab sich, dass Stichococcus,

Ulothrix und Protococcus dieses nicht nöthig haben, während Spirogyra und

Vaucheria ohne Kalk zu Grunde gehen.

Penhallow, D. P. Nematophyton Ortoni n. sp. (Ann. of Botany

1896. p. 41.) c. tab.

Beschreibung einer neuen Art des fossilen Algengenus.

Schilling, A. J. Zusammenstellung der in der Umgebung von München

vorkommenden Süsswasser-Peridineen. (Ber. d. Bayr. Bot. Ges.

IV. 1896. p. 41.)

Schroeder, BB Ueber Algen, insbesondere Desmidiaceen und Diato-

maceen, aus Tirol. (Jahresb. d. Schles. Ges. f. vat. Cult. 1894.

Breslau 1895. Zool. Bot. Sect. p. 42.)

Vorläufige Mittheilungen über die Bearbeitung einer grösseren Algen-

sammlung aus Tirol.

Setchell, W. A. and Osterhout, W. J. V. Some aqueous media for

preserving algae for class material. (The Bot. Gaz. 1896. p. 140.)

Die Verff, probirten Chromalaun, Formalin und Kampherwasser. Alle drei

sind gute Konservirungsmittel, indessen wirken sie nicht bei jeder Algenklasse

gleich günstig.

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(70)

Tilden, Josephine E. l.ist of fresh-water Algae collected in Minnesota

during 1895. (Minnesota Bot. Stud. Bull. 9. n. 8. 1896. p. 597.)

In Ergänzung früherer Listen sind 37 neu hinzugekommene Algenarten

aufgezählt.

Castracane, F. Intorno all’epoca di riproduzione nelle Diatomee

marine, (La Nuov. Notar. 1896. p. 37.)

Klebahn, H. Ueber das Verhalten der Zellkerne bei der Auxosporen-

bildung von Epithemia. (Verhandl. der Ges. Deutsch. Naturf. u.

Aerzte. 67. Vers. zu Lübeck 1895. p. 102.)

Der Zweitheilung der Mutterzellen zum Zweck der Auxosporenbildung geht

eine Viertheilung des Kerns voraus, so dass jede Tochterzelle 2 Zellkerne ent-

hält. Der eine bleibt gross und bietet das gewöhnliche Aussehen eines Kernes,

der andere wird klein und verschwindet nach dem Verschmelzen der Tochter-

zellen, so dass in den beiden Tochterzellen nur noch je 2 Kerne vorhanden

sind. Diese verschmelzen dann bei der Streckung der Zellen.

Müller, C. Die Ortsbewegung der Bacillariaceen IV. (Ber. d. Deutsch.

Bot. Ges. 1896. p. 111.) c. tab.

Da ein genaueres Eingehen ohne Figuren unmöglich ist, seien die Schluss-

folgerungen des Verf. wiederholt.

1. Die Rhaphe vermittelt die Leitung lebender Plasmaströme auf die

äusseren Schalenflächen.

2. Anderweitige Plasmaorgane ausserhalb der Zellwand sind nicht nach-

weisbar.

3. Die Rhaphe der Naviculeen, insbesondere der Pinnularien, ist eine

Propeller-Einrichtung, die den Plasmastrom tordirt und in Schraubenlinien zu

liessen zwingt.

4. Die diagonale Symmetrie der Pinnularien ist eine mechanische Anpassung.

5. An der Rhaphe ausschliesslich kommen die motorischen Kräfte zur

Wirkung; sie verrichten dort stets und vorzugsweise Arbeit gegen die Reibung,

mitunter auch gegen die Schwerkraft.

6. Die Plasmaströme haben die Ortsbewegung des Zellkörpers zur Folge,

wenn sie eine Geschwindigkeit überschreiten, welche mindestens das 1,5 fache

der dem Zellkörper mitzutheilenden Geschwindigkeit beträgt.

7. Die Oberfläche des Zellkörpers und die Reibungsflächen der Plasma-

bänder verhalten sich zu einander, wie die Länge zur Geschwindigkeit.

8. Zur Fortbewegung genügt ein flüssiges Medium; der Zellkörper bedarf

keines festen Substrates und keiner sogenannten Bewegungslage.

9. Aufein festes Substrat ist der Zellkörper nur in so weit angewiesen, als

eine senkrecht zur Apicalachse gerichtete Kraft mangelt und die motorische

Kraft nicht ausreicht, um den Widerstand der Schwerkraft neben dem der

Reibung zu überwinden.

10. Der in Tusche - Emulsion erscheinende Körnchen-Faden ist weder ein

Gallert- noch ein Plasma -Faden, sondern ein Körnchenstreifen.

11. Die Gallertbildungen stehen in keiner Beziehung zur Ortsbewegung.

Schawo, M. Beiträge zur Algenflora Bayerns, Bacillariaceae. (XIV. Ber.

des Bot. Vereins in Landshut 1896.)

& ie. F

(71)

Borge, C. Nachtrag zur subfossilen Desmidiaceenflora Gotlands.

(Botan. Notiser 1896. p. 111.) c. fig.

— Uebersicht der neu erscheinenden Desmidiaceen-Literatur. (La

Nuov. Notar. 1896. p. 44.)

Degagny, Ch. Recherches sur la division du noyau cellulaire chez

les vegetaux IV. (Bull. de la Soc. Bot. de Fr. 1896. p. 12.)

Die Vorgänge werden bei Spirogyra nitida geschildert.

De Wildeman, E. I.es Volvocacdes. Essais de syst&matique du groupe.

(Bull. de la Soc. belg. de microsc. XXI. 1896. p. 30.)

— Note sur la Chlorotylium incrustans Reinsch. (l. c. p. 82.)

Klercker, J. Ueber zwei Wasserformen von Stichococcus. (Flora

vol. 82. 1896. p. 90.)

Verf. cultivirte 2 Formen von Stichococcus längere Zeit unter verschiedenen

Bedingungen, wobei sich gewisse charakteristische Variationen ergaben, die er

näher beschreibt. Am Schluss giebt er eine Uebersicht über die bisher be-

kannten Formen der Gattung.

Macchiati, L.. A proposito della Symploca muralis Kütz., specie

nuova per la flora algologica italiana. (Bull. della Soc. Bot. Ital.

1896. p. 61.)

Murray, G. A new species of Caulerpa. (Journ. of Bot. 1896. p. 177.,

c. fig. 2

C. Bartoniae von Natal.

Schmidle, W. Chlamydomonas grandis Stein u. Chl. Kleinii Schmidle.

(Flora vol. 82. 1896. p. 85.) c. fig.

Dill hatte beide genannten Arten zusammengezogen, Schmidle weist jetzt

ausführlich nach, dass die von ihm aufgestellte Species nichts mit Chl. grandis

zu thun hat.

Stolley, E. Ueber gesteinsbildende Algen und die Mitwirkung solcher

bei der Bildung der skandinavisch -baltischen Silurablagerungen.

(Naturwiss. Wochenschr. 1896. p. 1713.)

Verf. verbreitet sich über die geologischen Ablagerungen, welche von

Algen herrühren und schildert hauptsächlich die Siphoneen des Silurs, die durch

Formenreichthum fast alle übrigen gesteinsbildenden Algen übertreffen. Mehrere

bisher zweifelhafte Genera konnte der Verf. sicher den Algen einreihen.

Sauvageau, C. Sur la nature des sporanges en chapelet de l’Ectocarpus

confervoides. (Journ. de Botan. 1896. p. 141.) c. fig.

Die Bildung dieser Sporangien führt Verf. auf die Existenz irgend eines

noch unbekannten Parasiten zurück.

— Sur l’Ectocarpus virescens Thuret et ses deux sortes de sporanges

pluriloculaires. (Journ. de Botan. 1896. p. 98, 113.) c. fig.

Ectocarpus virescens war von Thuret nur benannt, aber nicht beschrieben

worden, Auf Grund von frischem, reichlichem Material giebt Verf. nicht bloss

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eine genaue Beschreibung des Baues der Vegetationsorgane der Pflanze, sondern

auch die Fructificationsorgane konnte er in ihrer Entwickelung sorgfältig

studiren. Wichtig ist der Nachweis, dass zwei Arten von Sporangien, Meio- und

Megasporangien, vorhanden sind,

Setchell, W. A. Notes on Kelps. (Erythea 1896. p. 41.) c. tab.

Verf, giebt Notizen über das Vorkommen von Phaeophyceen an der kali-

fornischen Küste. Die Tafel bringt Dietyoneuron californicum Rupr.

Kaiser, 0. Ueber Kerntheilungen der Characeen. (Botan. Zeit. 1896.

p. 61.) c. tab.

Die hauptsächlichsten Ergebnisse der Arbeit fasst Verf. am Schluss zu-

sammen:

Die Form der Kerntheilung ist dieselbe in allen Zellen. Die Kerne theilen

sich nur karyokinetisch. Dagegen ist in den Segmentzellen, namentlich den-

jenigen der sogenannten Blätter, Aster, Metakinese und Dyasterstadium anders

geformt als in den übrigen sich karyokinetisch theilenden Kernen, Es findet

sich hier Tonnen-Karyokinese. — Alle Spindelfiguren in Scheitel-, Knoten-,

Rinden- und Randzellen sind hervorragend gross und die achromatischen

Spindelfasern stark bauchig nach aussen gekrümmt. — Centrosomen finden sich

sowohl im ruhenden Kern als auch an den verschiedenen Theilungsstadien. —

In den Internodialzellen und den Zellen der Hüllschläuche älterer Eiknospen,

also nur an bestimmten alten Zellen, findet die Kernvermehrung durch Frag-

mentation statt. — Die durch Fragmentation entstandenen Kerne der Internodien

sind hervorragend reich an Chromatinsubstanzen, diejenigen der Hüllschläuche

in erheblich geringerem Grade. — Nur in den alten Internodien und in den Zellen

der Hüllschläuche älterer Oogonien finden sich mehrere Kerne, in allen anderen

Zellen herrscht die Einzahl. — In allen Zellen finden sich Granula.

Davis, Br.M. The fertilization of Batrachospermum. (Ann. of Botany

1896. p. 49.) c. tab. 2.

Die Arbeit enthält eine ausführliche Schilderung der Fructificationsorgane

von Batrachospermum (B. moniliforme, coerulescens, Boryanum), sowie die Vor-

gänge der Befruchtung und der sich daran schliessenden Zelltheilungen. Die

hierbei gewonnenen Resultate sind sehr wichtig und bringen vieles Neue. Be-

sonders ist hervorzuheben, dass das Trichogyn eine vollständig selbstständige

Zelle ist, die also eigenen Zellkern besitzt und ein eigenes Chromatophor im

Jugendzustand. Das Carpogon besteht aus der unter dem Trichogyn liegenden

Zelle und steht mit dem Trichogyn durch einen Plasmastrang in Verbindung.

Wenn die Befruchtung des Carpogons vollendet ist, so wird der Plasmastrang

allmählich dünner und reisst endlich ganz ab. Auf weitere Einzelheiten einzu-

gehen, ist ohne Figuren nicht wohl möglich. Auch in Bezug auf die Schwierig-

keit, die Art der Befruchtung mit der bei andern Pflanzen in Einklang zu setzen,

sei hier nur auf das Original verwiesen.

— Development of the cystocarps of Champia parvula. (The Botan.,

Gaz. 1896. p. 109.) c. tab. 2.

Rodriguez, J. J. Note sur le Nitophyllum Lenormandii. (La Nuov.

Notar. 1896. p. 42.)

Verf, vervollständigt die unvollkommene Beschreibung der seltenen Pflanze.

(73)

V. Pilze.

Ahles, von. Allgemein verbreitete essbare und schädliche Pilze etc.

2. Aufl. Mit 32 farb. Taf. Esslingen (Schreiber) 1896. Pr. 3 M.

Bain, $.M. Fungicides on Peach Foliage. (Bull. Tenn Exper. Stat.

n. 8. 1895. p. 34.)

Cooley, R. A. The imported Elm Leaf Beetle, Maple Pseudococcus,

Abbot Sphinx, San Jose Scale (Hatch Exper. Stat. of the Massa-

chusets Agric. Coll. Bull. n. 36. 1896.) Amherst, Mass.

Craig, T. A rare Fungus parasitic on an Öscillaria. (Proc. Nat.

Sci. Assoc. Staten Island V. 1896. p. 17.)

Fautrey, F. et Lambotte. Especes nouvelles de la Cöte d’Or. (Rev.

mycol. 1896. p. 68.) c. tab. N. A.

Ferry, R. Le spot ou maladie des Taches des Orchidees par M.

Massee. (Rev. mycol. 1896. p. 63.) c. tab.

Die als „spot“ bekannte Blattkrankheit der Orchideen wird nicht von

einem Parasiten verursacht, sondern durch kleine auf den Blättern befindliche

Wassertröpfchen. Es entsteht dadurch in Verbindung mit anderen eigenartigen

Factoren Plasmolyse der Pallisadenzellen, die schliesslich absterben.

— Mimisme de champignons par des insects d’apres M. le prof.

Farlow. (Rev. mycol. 1896. p. 66.)

Cf. Botan. Gazette 1895. p. 547.

Green, W. J. Orchard Spraying. (Bull. of the Ohio Agric. Exper.

Stat., Wooster. Bull. n. 63. 1895.)

Halsted, B. D. Fungicides and Spraying. (Report. of the Botan.

Departm. of the New Jersey Agr. Coll. Exp. Stat. f. the year

1895. Trenton 1896. p. 319.)

Die Zusammenstellung gewährt einen trefflichen Ueberblick über die

Experimente, welche mit den verschiedensten Fungiciden während des Jahres

1895 auf der Versuchsstation ausgeführt wurden.

— Abnormal Growths due to Fungi. (l. c. p. 355.) ce. fig.

Es werden einige zur Beobachtung gelangten Missbildungen höherer

Pflanzen durch Pilze abgebildet und besprochen.

Hennings, P. Verzeichniss der bei Frankfurt a. O. am 8. u. 9. Juni

1895 beobachteten und gesammelten Pilze. (Verhandl. d. Bot.

Ver. d. Prov. Brand. 1895. p. XAXIV.)

Jones, M. E. Contributions to Western Botany VII. (Proc. of the

Californ. Acad. of Sc. V. 1895. p. 611.)

Am Schluss der umfangreichen Phanerogamenaufzählung auch einige neue

Pilze beschrieben.

Kloeber, C. Der Pilzsammler. 2. Aufl. Quedlinburg (C. F. Vieweg).

146 pag. mit Abbild. I’r. 2,25 M.

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(74)

Lodeman, E. 6. The spraying of plants. A succinct account of the

history, principles, and practice of the application of liquids and

powders to plants for the purpose of destroying insects and fungi.

London (Macmillan) 1896. 418 pag. Pr. 4 sh.

Ludwig, F. Sur les organismes des &coulements des arbres. (Revue

mycol. 1896. p. 45.) c. tab.

Zusammenstellung der bei den verschiedenen Baumflüssen beobachteten

Organismen.

Magnus, P. Nachtrag zu der Aufzählung der Peronosporeen, Exo-

asceen und Ustilagineen der Provinz Brandenburg. (Verhandl. d.

Bot. Ver. d. Pr. Brand. 1896. p. 1.)

Marchal, E. Les Champignons coprophiles de Belgique VII. (Bull.

de la Soc. roy. de Belgique NXXIV. 1896, p. 125.) c. tab. 2.

Marchand, L. Enumeration methodique et raisonnde des familles et

des genres de la classe des Mycophytes (Champignons et Lichens),

(Soc. d’editions scientif. Paris 1896.) 334 pag. u. 166 Figuren.

Massee, G. British Fungus-flora. A classified Textbook of Mycology.

London (George Bell & Sons, York Str., Covent Garden) I. 1892,

II. 1893. III. 1893. IV. 1895.

Wer sich der mühevollen Arbeit unterzicht, die Pflanzen eines bestimmten

geographischen Gebietes zusammenzustellen und damit eine Zusammenfassung

unseres heutigen Wissens und die Grundlage für zukünftige Forschungen zu

geben, der hat gewiss Anspruch auf den Dank aller derjenigen, welche der

Flora ihres Landes Aufmerksamkeit schenken. Eine Pilzflora eines Landes ge-

hört zu den schwierigsten floristischen Arbeiten, zumal wenn sie so reich ist

wie die englische. In der vorliegenden neuen englischen Pilzflora ist gegenüber

der von Cooke ein wesentlicher Fortschritt zu erkennen. Nicht blos die Zahl

der Arten hat sich wesentlich vermehrt, sondern die kritische Sonderung der

Formen ist durchgängig eine sicherere und bessere geworden. Massce hat ein

Werk geschaffen, das seiner Sachkenntniss Ehre macht. Gewiss sind Einzel-

heiten auszusetzen und Verschen gemacht worden, aber bei der Beurtheilung

eines solchen weitschichtigen und schwierigen Werkes muss ein ganz anderer

Maassstab der Kritik angewendet werden, wie bei eng begrenzten Abhandlungen.

Trotzdem Deutschland eine mustergiltige Kryptogamenflora sein eigen nennt,

muss doch bei speciellen Studien das Werk Massee’s zu Rathe gezogen werden.

Es sei deshalb allen Pilzfloristen die Benutzung des Buches auf das Angelegent-

lichste empfohlen. Jeder, der es gebraucht, wird bald seine Unentbehrlichkeit

für viele Fragen der Synonymie und Diagnostik einsehen,

Es sei noch kurz der Inhalt der bisher erschienenen 4 Bände angegeben.

Band I bringt die Basidiomyceten bis zu den schwarzsporigen Agaricinen,

Neu ist das Thelephoraceengenus Aldridgea.

Band II enthält die Fortsetzung der Agaricinen, die braun-, rosa- und weiss-

sporigen. Verf. vereinigt unter den einzelnen Farbenabtheilungen alle Gattungen,

nimmt also nicht blos, wie es bisher meist üblich war, die alten Fries’schen

Untergattungen von Agaricus in diese Gruppen auf, Der Band schliesst mit

Laccaria ab,

(75)

Band III enthält in seiner ersten Hälfte den Schluss der Leucospori von

Lactarius bis Amanita. Die 2. Abtheilung des Bandes bringt die Hyphomyceten,

d. h. die Conidienträger bildenden Fungi imperfecti.

Band IV bringt die Gymnoascaceae, Exoascaceae, Hysteriaceae und Discomy-

cetes. Neu sind die Gattungen Schweinitzia (Dermateaceae), Phaeangella (Derma-

teaceae), Echinella (Pezizeae), Diplocarpa (Pezizeae), Curreyella (Pezizcae).

Die neuen Arten der einzelnen Bände sind bereits im XI. Bande der Sylloge

von Saccardo und im Elenchus Hedwigia 1896. Rep. VII. aufgenommen.

Die einzelnen Gattungen werden durch Holzschnitte illustrirt. Auch sind

für wichtigere anatomische Details reichlich Bilder gegeben. Der Preis des ge-

bundenen Bandes beträgt etwa 6—7 sh. Erscheinen werden noch 2—3 Bände.

Die Ausstattung des Werkes ist tadellos. Nach Erscheinen der Fortsetzung soll

auf das wichtige Werk zurückgekommen werden,

Massee, 6. New or critical Fungi. (Journ. of Botany 1896. p. 145.)

c.tab. N. A.

Renesse, A. von u. Karus, L. Krankheiten der landwirthschaftlichen

Kulturgewächse und deren Verhütung. (Landwirthsch. Zeit. XIV.

1896. p. 21.)

Reuter, EE Mykologische Mittheilungen aus Dänemark. (Zeitschr.

f. Pflanzenkr. 1896. p. 84.) Zusammenstellung nach Rostrup Botan.

Tidskrift 19. 1895.

Rolland, L. Aliquot fungi novi vel critici Galliae praecipue meridio-

nalis. (Bull. de la Soc. Mycol. de France 1896. p. 1.) c. tab. 2.

N. A.

Die neuen Arten sind bereits im Elenchus 1896. Rep. VII. enthalten.

Rostrup, E. Mykologiske Meddedelser VI. Spredte Jagttagelser fra

1894. (Botan. Tidsskrift XX. 1896. p. 126.) c. fig.

— Vaertplantens Indflydelse paa Udviklingen af nye Arter af para-

sitiske Svampe. (Overs. ov. det K. Danske Vidensk. Selsk.

Forhandl. 1896.)

— Oversigt over Sygdommenes optraeden hos Landbrugets Avls-

planter i Aaret 1894. (Tidsskrift for Landbrugets Plantenol. I.

1896. p. 40.)

Saccardo, P. A. Notes mycologiques. (Bull. de la Soc. Myc. de Fr.

1896. p. 64.) c. tab. 3.

N. A. aus verschiedenen europäischen Ländern.

Schroeder, E.A. Die Pilze als Nahrungsmittel. (Centralbl. f. d. ges.

Forstwesen 1896.)

Sorauer, P. Bericht über eine mit Unterstützung des kgl. preuss.

landwirthschaftlichen Ministeriums unternommene Umfrage betreffs

der im Jahre 1894 durch Krankheiten und Feinde verursachten

Erntebeschädigungen. (Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 85.)

(76)

Sturgis, W. C. Miscellaneous notes on various fungus diseases,.

(19. Ann. Rep. of the Connecticut Agric. Exp. Stat. for 1895,

New Haven 1896. p. 185.)

Notizen über Uncinula spiralis, Alternaria auf: Melonen, Cylindrosporium

Padi u, Puccinia Malvacearum.

Underwood, L. M. and Earle, F. $. Treatment of some fungous

diseases. (Alabama Agric. Exp. Stat. of the Agric. and Mech.

Coll., Auburn. Bull. n. 69. 1896. p. 245.)

Vuillemin, P. Ouelques champignons arboricoles nouveaux ou peu

connus. (Bull. de la Soc. Myc. de Fr. 1896. p. 33.) N. A.

Wakker, J. H. en Went, F. A. F.C. Overzicht van de Ziekten van

het Suikerriet op Java I. (Arch. voor de Java-Suikerindustr. 1896,

Af. 9.) c. tab,

Die Abhandlung giebt eine Uebersicht über die Krankheiten des Zucker-

rohres, die durch pilzliche Parasiten verursacht werden. Genannt sind mit ihren

Kennzeichen und Bekämpfungsmitteln: Ustilago Sacchari Rabh,, Thielaviopsis

aethaceticus Went, Colletotrichum falcatum Went, Marasmius Sacchari Went,

Cercospora Köpkäi Krüg., Uredo Kühnii (Krüg.) Went et Wakk., Coleroa

Sacchari van Breda de Haan, Leptosphaeria Sacchari van Breda de Haan,

Cercospora Sacchari van Breda de Han, Pestalozzis spec., Cercospora Vaginae

Krüg., ausser diesen noch eine Anzahl anderer Krankheiten, von denen die

Uszsache wahrscheinlich pilzlicher Natur, aber noch nicht genauer bekannt ist.

Magnus, P. Mycel u. Art des Parasitismus der Sclerospora Kriegeriana,

(Verhandl. der Ges. Deutsch. Naturf. u. Aerzte. 67, Vers. zu Lübeck.

1895. p. 100.)

Der vor Kurzem entdeckte Pilz wächst auf Phalaris arundinacea, wo er in

den Blättern wenig hervortretende Flecke in der Nähe der Nerven bildet. Das

Mycel wächst intercellular und zerdrückt die Parenchymzellen durch sein

mächtiges Wachsthum, Haustorien werden nicht gebildet, wohl aber „Saug-

warzen“, die sich den Leptomtheilen fest anlegen.

Maurizio, A. Studien über Saprolegnieen. (Flora vol. 82. 1896. p. 14.)

c. tab.

Das 1. Capitel beschäftigt sich mit der Cultur der Saprolegnieen in Nähr-

lösungen. Im 2. Capitel werden die bisherigen Ansichten über die Pilzkrankheit

der Fische und der Fischeier besprochen (vergl. dazu den Aufsatz über: Die

Wasserpilze als Parasiten der Fische). Das 3. Capitel bringt eigene Beobach-

tungen über den Parasitismus der Saprolegnieen (vergl. die folgenden Arbeiten

desselben Verf.).

— Die Pilzkrankheit der Fische und der Fischeier. (Zeitschr. f.

Fischerei u. deren Hilfswissensch. 1895. Hf. 6.)

Verf. bringt eine ausführliche historische Uebersicht über die Arbeiten,

welche sich mit den Krankheiten der Fische und Fischeier, soweit sie durch

Saprolegniaceen verursacht werden, beschäftigen. Er bringt dann einige eigene

Beobachtungen über Infectionen von Fischeiern und beschreibt Versuche, die

(77)

er selbst vorgenommen hat. Es ist ausserordentlich verdienstvoll, dass der

Vert. diese für die practische Fischerei so hochwichtige Frage der Fischkrank-

heiten in Angriff genommen hat; es ist höchst wahrscheinlich, dass sich durch

Experimentiren ein Mittel finden lässt, welches die Schädigungen der Fische

durch die Saprolegniaceen verhindert.

Maurizio, A. Die Wasserpilze als Parasiten der Fische. (Zeitschr. f.

Fischerei u. deren Hilfswissensch. 1895. Hf. 6.) c. fig.

Einige Angaben für die Praktiker über die Unterscheidung der auf Fischen

parasitirenden Saprolegniaceen.

— Die Sporangiumanlage der Gattung Saprolegnia. (Pringsh. Jahrb.

XXIX. 1896. p. 75.) c. tab. 2.

Maurizio hatte bereits in einer früheren Arbeit für Saprolegnia rhaetica

das Vorhandensein eigenthümlicher Fructificationsorgane festgestellt, die sich

entweder zu Oogonien oder Zoosporangien umbilden können. Die Sporan-

giumsanlagen oder Conidien, wie Verf. diese Gebilde nennt, werden nun in der

vorliegenden Arbeit genauer untersucht und ihr Vorhandensein für eine grössere

Zahl von Arten festgestellt. Auf die verschiedene Ausbildung der Conidien, wie

sie bei den einzelnen Arten beobachtet wurden, soll hier nicht näher ein-

gegangen werden.

Wichtig sind die Schlüsse, die Verf. aus seinen Beobachtungen zicht.

Sie werfen auf die Morphologie der Saprolegniaceen ein ganz neues Licht und

zeigen von neuem die Richtigkeit der Brefeldschen Auffassung. Die Thatsache,

dass sich aus den Conidiesporangien bald geschlechtliche bald ungeschlechtliche

Sporangien entwickeln können, zeigt die Wahrscheinlichkeit der Ansicht, dass

phylogenetisch die geschlechtlichen und die ungeschlechtlichen Sporangien einem

gemeinsamen Ursporangium entspringen. — Da bei den Saprolegnien die ge-

schlechtliche Fructification nur noch selten ausgebildet wird, so sieht Maurizio

die Gruppe als in Rückbildung begriffen an. Während die geschlechtliche

Fortpflanzung im Rückgang begriffen ist, hat sich diejenige Fortpflanzungsform,

aus der sich geschlechtliche und ungeschlechtliche Sporangien entwickelten,

nicht blos erhalten, sondern erscheint, wie sich aus der Art ihrer Fruchtstände

ersehen lässt, in einem Stadium aufsteigender Entwickelung begriffen. Diese

hier nur ganz kurz skizzirten phylogenetischen Ergebnisse sind ausserordentlich

interessant und werden, wenn noch andere Gattungen in den Kreis der Unter-

suchung gezogen sind, unsere Ansichten von dem phylogenetischen Zusammen-

hang der Formen wesentlich modificiren.

Raciborski, M. Ucber den Einfluss äusserer Bedingungen auf die

Wachsthumsweise des Basidiobolus ranarım. (Flora vol. 82. 1896.

p. 107.) c. fie.

Verf. untersuchte den Einfluss näher, den die äusseren Bedingungen,

namentlich die chemische Zusammensetzung der Nährlösung auf die Wachs-

thumsweise des Basidiobolus hat. Ohne auf die Ansichten des Verf. über die

Verwandtschaft der niederen Pilze unter sich und mit den Algen eingehen zu

wollen, seien aus der Arbeit nur die wichtigsten Punkte hervorgehoben.

Peptonlösung ernährt am besten. Erst beim Erschöpfen der Nährlösung

tritt Zygosporenbildung ein. Man kann also so lange die Ausbildung der Zygo-

sporen verhindern, als es möglich ist, allen Theilen des Pilzrasens immer wieder

frische Nährlösung zuzuführen. — Ist in der Nährlösung Ammoniak oder ein

Amin oder bei normaler mineralischer Lösung Kohlenstoff als Glukose, Maltose

u er

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(78)

etc. vorhanden, so geht der Pilz in ein typisches Palmellaceenstadium über. —

Das Palmellastadium führt zur Bildung freier einzelliger Individuen. — Mit er-

höhter Concentration der Nährlösung werden die Zellen kürzer, die Theilungs-

wände stehen schief und oft longitudinal. Ferner treten oft Ruhezellen mit

dicken Membranen auf, deren Keimfähigkeit nur kurze Zeit andauert. — Bei

Erschöpfung der Nährlösung tritt Zygosporenbildung ein. Während aber die

Vereinigung des Plasmas beider Zygoten gleich erfolgt, kann die Vereinigung

der Kerne beschleunigt oder verhindert werden. Verf. führt diesbezügliche Ver-

suche an.

Hori, $. On the Smut of Japanese Cereals. (The Tokyo Bot. Magaz.

1896. Pt. I. p. 76, 115.) Japan.

Omori, J. Some remarks on Mr. Takahashi’s Paper on the identity

of Ustilago virens Cke. and Ustilaginoidea Oryzae Bref. (The Tokyo

Botan. Mag. 1896. Pt. II. p. 29.) c. fig.

Verf, betrachtet die Identität beider Pilze noch nicht für erwiesen, hält aber

Ustilago virens ebenfalls als nicht zur Gattung Ustilago gehörig. Er stellt den

Pilz zu der Gattung Sphacelotheca. Neue Thatsachen, um seine Meinung zu

begründen, bringt er leider nicht.

Selby, A. 0. The Smut of Oats and its prevention. (Bull. of the

Ohio Agric. Exp. Stat., Wooster, Bull. n. 64. 1896.)

Es wird der Haferbrand, Ustilago Avenae, näher besprochen und vor

Allem di@ Mittel discutirt, die zur Bekämpfung der Krankheit führen. Es werden

Experimente angeführt, welche die Wirksamkeit verschiedener Behandlungen

näher auseinander setzen. Die Resultate, die schliesslich gewonnen werden, sind

die nämlichen, die man auch in Europa bereits zur Bekämpfung der Brandkrank-

heiten erhalten hat. Die Behandlung des Saatgutes mit heissem Wasser oder

mit Kupfersulfatlösung hat die besten Erfolge gehabt.

Sturgis, W. C. Transplanting, as a preventive of smut upon onions.

(19. Ann. Rep. of the Connecticut Agric. Exp. Stat. for 1895. New

Haven 1896 p. 176.) c. fig.

Takahashi, Y. On Ustilago virens Cke. and a new species of Tilletia

parasitic on Rice-plant. (The Tokyo Botan. Magaz. 1896. Pt. II.

p. 16.) c. tab.

Verf, weist in längerer Ausführung nach, dass Ustilago virens Cooke und

Tilletia Oryzae Pat. identisch sind. Da der Pilz jetzt zum Vertreter einer neuen

Hypocreaceengattung erhoben ist, so muss er nunmehr den Namen Ustilagi-

noidea virens (Cooke) Takah. führen.

Er beschreibt ferner eine neue Tilletia auf Oryza sativa, T. horrida,

Bourquelot, E. et Bertrand, G. l.es ferments oxydants dans les Cham-

pignons. (Bull. de la Soc. Mycol. de France 1896. p. 18.)

Etwa 200 Arten von Pilzen, meist Basidiomyceten, wurden von den Verff,

untersucht, um die Fermente näher kennen zu lernen, welche Sauerstoff aus

der Luft aufnehmen. In den meisten der untersuchten Arten wurden auch solche

Laccase -artige Stoffe gefunden.

(79)

Bourquelot, E. et Bertrand, G. Sur la coloration des tissus et du suc

de certains champignons au contact de l’air. (Bull. de la Soc.

Mycol. de France 1896. p. 27.)

Die bekannte Erscheinung, dass manche Pilze (z. B. Boletus-Arten) an der

Luft auf der Bruchfläche ihre Farbe ändern, wird von den Verff. folgender-

maassen erklärt: In diesen Pilzen befindet sich ein Laccase-ähnliches, oxydirendes

Ferment, welches in dem Moment, wo es Sauerstoff aufnimmt, einem anderen

chemischen Stoff eine andere Färbung ertheilt. Dieser chemische Stoff wurde

isolirt und färbte sich an der Luft nicht, wohl aber trat die bekannte Farben-

reaction (blau oder schwärzlich) sofort ein, wenn Laccase in Berührung mit

Luft zugesetzt wurde.

De Seynes. Deux Collybia comestibles. (Bull. de la Soc. Myc. de

Fr. 1896. p. 52.)

2 neue Arten vom Congo.

Gillet, C.C. Champignons de France. Les Hymenomycetes. 10. Livr.

1896.

Hennings, P. Aecidium importatum n. sp. (Verhandl. d. Bot. Ver.

d. Pr. Brand. 1895. p. XXV.) N. A.

— 1. Lenzites abietina Fr., ein Zerstörer des Fichtenholzes in Wohn-

gebäuden, 2. Ceratostomella pilifera (Fr.) Wint. etc. (Verhandl.

d. Bot. Ver. d. Prov. Brand. 1895. p. LVII.)

Jacobasch, E.E Tricholoma macrorhizum (Lasch) Fr. —= Armillaria

macrorhiza mihi. (Verhandl. d. Bot. Ver. d. Prov. Brand. 189.

p. LXI.)

Ignatieff, V. Destruction par le Merulius lacrymans du plancher

d’une salle d’höpital a Moscou. (Revue d’hygiene 1896. p. 10.)

Klebahn, H. Beobachtungen über heteroecische Rostpilze. (Verhandl.

d. Ges. Deutsch. Naturf. u. Aerzte, 67. Vers. zu Lübeck. 1895,

p. 99.)

Verf. führt kurz aus, dass nach seinen Culturversuchen die alte Puccinia

coronata nicht blos in P. coronata (Acc. auf Frangula) und P. coronifera (Aec.

auf Rhamnus) zerspalten werden müsse, sondern jedenfalls noch in weitere Arten

zu zerlegen sei, weil z. B. P. coronata auf Avena sativa, nicht auf Lolium perenne,

Holcus, P. coronifera auf Lolium, nicht auf Avena sativa und Holcus übergehe.

Nach anderen Beobachtungen vom Verf. scheint es ihm, als ob diese Formen

doch als gesonderte Arten, nicht aber als Gewohnheitsrassen aufzufassen seien.

Magnus, P. Eine neue Uredineengattung Schroeteriaster, gegründet

auf Uromyces alpinus. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 129.)

c. tab.

Die Teleutosporen des Pilzes sind zu einem mehrschichtigen, festen Lager

mit einander verbunden. Der Pilz, der zu den Puccinieen gehört, hat mit der

Gattung Phakopsora unter den Melampsoreen eine grosse Aehnlichkeit in der

Ausbildung der Teleutosporenlager.

(80)

Magnus, P. Eine schärfere Unterscheidung des Uredo zweier Ure-

dineen auf nahe verwandten Wirthspflanzen und eine daraus resul-

tirende Berichtigung. (Verhandl. d. Bot. Vers. d. Pr. Brand. 1896.

5:11.) 05

Auf Grund der Anzahl der Keimporen lassen sich die Uredo der Rumex-

bewohnenden Arten von Puccinia und Uromyces leicht unterscheiden.

Die Uredosporen von Puccinia Acetosae besitzen 2 Keimporen, die von

Uromyces Rumicis 3. Dagegen haben die Uredosporen von Uromyces Acetosae

2 oder 3 Poren, aber dicht stehende Stacheln, während die beiden anderen Arten

locker bestachelt sind.

Patouillard, N. Le genre Cyclomyces. (Bull. de la Soc. Myc. de

Fr. 1896. p. 45.)

Uyclomyces zeichnet sich unter den Polyporeen dadurch aus, dass die Unter-

seite des Hutes mit concentrischen Lamellen-artigen Vorsprüngen bedeckt ist.

Die 5 bisher bekannten Arten theilen sich in 2 Gruppen, 1. solche mit halbirtem,

seitlich sitzendem Hut und 2. solche mit central gestieltem Hut.

In der ersteren Abtheilung gehören L. fuscus Kze. et Fr., C. stereoides

Sacc. et Paol., C. Beccarianus Ces. Vielleicht identisch mit C. fuscus sind Poly-

porus campyloporus Mont. und Hexagona tabascina Lev. Zu dieser Gruppe

gehören ferner Favolus transiens Ces., Polyporus cichoriaceus Berk., iodinus

Mont., setiporus Berk., tabacinus Mont., fuscus L.ev., pavonius Fr. und micro-

cyclus (Zipp.) L&v. Zur 2, Gruppe gehören nur C. Greenii Berk. et Curt. und

turbinatus Berk.

Es ist nicht unbedingt nothwendig, das Genus als solches aufrecht zu er-

halten, da nach Polyporus, Hexagonia, Irpex, Daedalea hier Uebergänge sich

finden. Das beste ist, die Gattung zu Polystictus zu stellen und zwar Gruppe I

in die Nähe von Polysticti caperati, Gruppe II als besondere Section Cycloporus

neben Section Pelloporus Qucl.

Poirault, &. u. Raciborski, M. Ueber conjugate Kerne und die con-

jugate Kerntheilung. (Biol. Centralbl. 1896. p. 24.)

Richards, H.M. Notes on cultures of Exobasidium Andromedae and

of E. Vaceinii. (The Botan. Gaz. 1896, p. 101.) c. tab.

Aus Kulturversuchen an frei lebenden Pflanzen ergab sich, dass E. Andro-

medae an E. Vaccinii nicht wesentlich verschieden ist, sondern höchstens als

Form von letzterem zu unterscheiden ist.

Rostrup, E. Biologiske Arter or Racer. (Botan. Tidsskrift XX. 1896.

p. 116.)

Schwalb, K. Aus meiner mykologischen Sammelmappe. (l.otos 1896.)

c. tab. 2.

Verf. bringt Beobachtungen über die Hymenomycetenflora Böhmens im

Jahre 1895. Auf diese interessanten Verzeichnisse kann nicht näher eingegangen

werden. weil ihr Werth hauptsächlich auf dem Vergleich mit dem Wachsthum

in den früheren Jahren (vergleiche die früheren Jahrgänge des Lotos) beruht.

Von neuen Arten sind einige beschrieben.

Went, F.A. F.C. Die Schwefelkohlenstoffbildung durch Schizophyllum

lobatum. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 158.) c. tab,

(81)

Went weist nach, dass die Mycelien des Pilzes an kleinen Drüsen geringe

Mengen von Schweielkohlenstoff bilden. Er versucht die Bedingungen zu finden,

unter denen sich dieser Stoff bildet, kommt aber dabei noch nicht zu sicheren

Schlüssen. Weitere Mittheilungen über dies interessante Stoffwechselproduct

stehen in Aussicht.

Boudier, E. Description de quelques nouvelles esp£ces de Discomy-

cctes de France. (Bull. de la Soc. Mycol. de France 1896. p. 123

c. tab. N. A.

Die neuen Arten sind bereits im Elenchus 1896 Rep. VII. enthalten.

Chatin, A. Truffes (Terfäs) de Mesrata, en Tripolitaine. (Compt.

rend. CXXII. 1896. p. 861.)

Engler-Prantl. Die natürlichen Pflanzenfamilien. Pezizineae, Phaci-

diineae u. Hysteriineae von G. Lindau. Lief. 130 u. 137. 1896.

Die vom Verf. nach J. Schroeter's Tode fortgesetzte Bearbeitung der

Discomyceten enthält die angegebenen Ordnungen mit folgenden Familien und

Gattungen:

Pyronemaceae: Ascodesmis, Ascocalathium, Pyronema, Pyronemella.

Pezizaceae: Sphaerospora, Pseudoplectania, Plicariella (= Detonia |Bar-

laea] + Plicariella), Lachnea (Lachnca + Plectania), Sarcosphaera, Peziza (mit den

Untergattungen Plicaria, Tazzetta, Humaria, Geopyxis, Discina, Acetabula, Macro-

podia, Aleuria und Galactinia), Otidea, Phillipsia, Midotis.

Ascobolaceae: Cubonia, Lasiobolus, Ascophanus, Rhyparobius, Strepto-

theca, Zukalina, Gloeopeziza, Boudiera, Saccobolus, Ascobolus.

Helotiaceae: Sarcoscypha, Pilocratera, Chlorosplenium, Ciboria, Rut-

stroemia, Sclerotinia, Eriopeziza, Arachnopeziza, Lachnellula, Desmazicerella,

Dasyscypha, Lachnella, Lachnum, Erinella, Pitya, Hymenoscypha, Cyathicula,

Belonium, Belonioscypha, Helotium, Gorgoniceps, Pocillum, Stamnaria, Ombro-

phila, Coryne.

Mollısiaceae: Tapesia, Trichobolonium, Mollisiella, Mollisia, Niptera,

Belonidium, Belonopsis, Pseudopeziza, Fabraea, Pirottaea, Pyrenopeziza, Beloniella,

Orbilia, Calloria, Actinoscypha, Henningsiella.

Celidiaceae: Agyrium, Phacopsis, Lecideopsis, Conida, Celidium.

Patellariaccac: Patellea, Durella, Caldesia, Starbaeckia, Patinella,

Nesolechia, Scutula, Karschia, Melaspilca, Hysteropatella, Abrothallus, Johansonia,

Leciographa, Patellaria, Pragmopora, Scutularia, Lahmia, Bactrospora, Biatorella,

Baggea, Ravenelula.

Cenangiaccae: Velutaria, Cenangium, Schweinitzia, Cenangella, Crume-

nula, Tryblidiella, Pscudotryblidium, Rhytidopeziza, Godronia, Dermatea, Tym-

panis, Pulparia, Bulgariella, Bulgaria, Sarcosoma, Paryphedria, Sorokina, Holwaya,

Sarcomyces, Haematomyces, Haematomyxa, Crinula, Hymenobolus, Ephelina,

Ameghiniella, Berggrenia, Atichia.

Cordieritidaceae: Cordierites,

Cyttariaceae: Cyttaria.

Phymatosphaeriaceae:Philippsiella, Leptophyma, Microphyma, Harknes-

siella, Molleriella, Eurytheca, Ascomycetella, Cookella, Phymatosphaeria.

Die Phacidiineae enthalten folgende 3 Familien:

Stictidaceae: Ocellaria, Naevia, Stictophacidium, Stegia, Laquearia, Briar-

dia, Propolis, Propolina, Phragmonaevia, Cryptodiscus, Xylogramma, Propolidium,

Phaneromyces, Melittiosporium, Platysticta, Naemacyclus, Karstenia, Stictis,

Lasiostictis, Schizoxylon, Eupropolis, Coccopeziza.

Hedwigia Bd, AAXXV, 1890.

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(82)

Tryblidiaceae: Tryblidiopsis, Tryblidium, Urnula, Odontotrema, Hetero-

sphaeria, Scleroderris,

Phacidiaceae: Pseudophacidium, Dothiora, Rhagadolobium P. Henn. et

Lindau n. gen., Coccophacidium, Clithris, Pseudographis, Phacidium, Trochila,

Cryptomyces, Sphacropezia, Schizothyrium, Keithia, Coccomyces, Pseudorhytisma,

Rhytisma, Marchalia, Cocconia.

Die Hysteriineae umschliessen 5 Familien, von denen die ersten 3 noch

behandelt sind.

2, Hypodermataccae: Henriquesia Farlowiella, Hypodermella, Hypoderma,

Angelinia, Gloniella, Rhytidhysterium, Hysteropsis, Lophodermium,

Dichaenaceae: Vichaena.

Östropaceae: Ostropa, Robergea.

Magnus, P. Una parola di rettifica. (Bull. della Soc. Botan. Ital.

1896. p. 81.)

Massalongo, C. Supra due nuovi Pirenomiceti epaticicoli. (Mem.

dell 'Acc. delle Sc. Med. e Nat. di Ferrara 5. Mai 1895.) c. tab.

N. A.

Rabenhorst’s Kryptogamenflora. Pilze IIl. bearbeitet von H. Rehm.

Lieferung 53.—56. Schluss. 1896.

Mit den vorliegenden Lieferungen schliesst ein Werk ab, das für die

Systematik der Discomyceten die klassische Grundlage abgiebt. Es existiren

nur wenige Bücher, die mit gleicher Sachkenntniss und gleicher Kritik ein

Thema wie das vorliegende behandeln. Wenn auch der Verf. in erster

Linie die mitteleuropäischen Discomyceten berücksichtigt, so giebt er doch in

seinen kritischen Anmerkungen so viele werthvolle Notizen über diese Pilze aus

anderen Florengebieten, dass die Bedeutung des Buches weit über die Grenzen

des behandelten Gebietes hinausreicht. Obwohl es viele frühere Versuche giebt,

die Discomyceten in ein System zu bringen, so muss doch Rehms Eintheilung

als die am meisten den heutigen Ansichten der Mycologie entsprechende an-

gesehen werden. Gewiss ist vieles noch schwankend, vieles noch ungenügend

bekannt, aber der Grund ist jetzt gelegt, auf dem spätere Forscher mit Erfolg

weiter bauen können.

Die Lieferungen bringen von den Ascobolaceen den Schluss von Rhyparobius,

Thelebolus, Zukalina, Boudiera, Saccobolus, Ascobolus, ferner die Helvellaceen;

1) Rhizineae: Psilopezia, Rhizina, Sphaerosoma;, 2) Geoglosseae: Mitrula, Micro-

glossum, Geoglossum, Spathularia, Leotia, Cudoniella, Cudonia, Vibrissea;

3) Hellvelleae: Helvella, Gyromitra, Verpa, Morchella. Ueber 4 Bogen Nachträge

mit der Beschreibung zahlreicher neuer oder neu aufgelundener Arten, Berich-

tigungen und kritischen Noten schliessen den Band. Beigegeben ist das von

OÖ. Pazschke bearbeitete Namenregister, das gestattet, jeden Namen und jedes

Synonym zu finden.

Sturgis, W. C. A leaf curl of Plum. (19. Ann. Rep. of the Connec-

ticut Agric. Exp. Stat. for 1895. New Haven 1896 p. 183.) c. tab.

Beobachtungen über Exoascus mirabilis auf Prunus triflora Roxb.

Unterwood, L. M. On the distribution of the North American Hel-

vellales. (Minnesota Bot. Stud. Bull. 9. u. 8. 1896. p. 483.)

Die Arbeit bringt eine monographische Uebersicht über die in Nordamerika

vorkommenden gymnocarpen Discomyceten mit den 3 Familien Helvellaceae,

an DS ei DE 2 az “ en > = ee Ei wi" se ae DE

(83)

(Greoglossaceae und Rhizinaceae. Davon kommen aus der 1. Fam. vor Helvella

mit 12 Arten, Gyromitra (7), Verpa (2), Cidaris (1), Morchella (8). Die 2. Fam.

umfasst Geoglossum (10), Microglossum (8), Leptoglossum (3), Mitrula (6), Spa-

thularia (2), Leotia (5), Cudoniella (2), Cudonia (2), Vibrissea (1). Die 3. Fam.

besitzt die 3 Gattungen Rhizina (2), Psilopezia (3) und Unterwoodia (1).

Vuillemin, P. Sur les tubes penicilles du p£rith@ce des Erysiphacdes.

(Rev. mycol. 1896. p. 61.)

Verf. bringt Beobachtungen über die Entwickelung der innern Schicht der

Perithecienwandung bei Phyllactinia suffulta. Er beobachtete, wie aus den

Zellen dieser Schicht paraphysenartige Fäden hervorwachsen, die später voll-

ständig wieder verschwinden. Bei der Reifung der Schläuche nämlich wird die

Membran dieser Fäden zu dicker Gallerte, welche zum Wachsthum der Schläuche

resorbirt wird.

Wagner, G. Beiträge zur Kenntniss der Pflanzenparasiten I. (Zeitschr.

f. Pflanzenkr. 1896. p. 76.)

Verf. theilt Beobachtungen über die schädliche Einwirkung von Pezicula-

arten auf Waldbäumen in der sächsischen Schweiz mit. Pezicula cinnamomea

auf Rothbuchen und P. carpinea auf Weissbuchen richten grossen Schaden an,

da die inficirten Bäume nach einigen Jahren absterben. Impfungen der Bäume

wurden mit Erfolg gemacht.

In einem Zusatz constatirt Verf., dass E. Fischer sein Peridermium Boudieri

und P. Magnusianum vor ihm veröffentlicht habe, so dass diese vor P. Dietelii

und Magnusii die Priorität haben.

Arnold, F. Lichenologische Ausflüge in Tirol. (Verhandl. d. z. b.

Ges. zu Wien. 1896. p. 101.)

XXVL Pians, XXVII. Galtür, XXVIIH. Wolkenstein, XXIX. Plansee und

Nachträge zu früheren Ausflügen.

Die interessanten Schilderungen des Verf. gehören zu dem besten, was über-

haupt bisher über die Kryptogamen des Hochgebirges veröffentlicht ist. In der

vorliegenden Arbeit interessirt ausser den vielen bemerkenswerthen Formen des

Thales und der Abhänge besonders die Flora der höher gelegenen Felsen und

der Gletscherzungen. Letztere ist genauer am Jamthalgletscher studirt worden

und bietet viele Punkte, die geeignet sind, ein Licht auf die Besiedelung der

vom Gletscher frei gegebenen Felsen durch die Pflanzenwelt zu werfen. An

neuen Arten werden, ausser Ergänzungen zu den Diagnosen bereits bekannter,

mitgetheilt: Polycoccum thallicolum auf Lecideathallus am Gatschkopf,

Phaeospora propria an Felsen bei Mori.

Fisher, J. 0. R. Lichens of Licking County, Ohio. (Bull. of the

Scientific Labor. of the Denison Univ. IX. 1895. p. 11.)

Lederer, M. Einige für Bayern neue Flechten. (Ber. d. Bayer. Bot.

Ges. IV. 1896. p. 26.) c. fig,

Neu ist Pyrenodesmia monacensis.

Malme, G. 0. A. De sydsvenska formerna af Rinodina sophodes (Ach.)

Th. Fr. och R. exigua (Ach.) Th. Fr. (Bih. till. K. Svenska Vet.

Ak. Handl. XXI. Afd. III. n. 11. 1895.) c. tab. 2.

TER REN

(84)

Im 1. schwedisch geschriebenen Theil bringt Verf, die Geschichte der

Arten, ihren anatomischen Bau, Begrenzung, sowie geographische Verbreitung.

Der 2 Theil bringt lateinisch die Beschreibungen der Arten, die im süd-

lichen Schweden vorkommen. Ausserordentliche Mühe hat Verf. auf die Klärung

der Synonymie verwandt, ebenso auf genaue Feststellung der Verbreitung. Die

zu den Gruppen der beiden Flechten gebrachten Arten sind folgende: R. pyrina

(Ach.) Arn., R. sophodes (Ach.) Hellb., R. milvina (Wahlbg.) Th. Fr., R. atro-

cinerea (Dicks.) Arn., R. demissa (Flk.) Arn., R. laevigata (Ach.) Malme, R. exigua

(Ach.) Arn., R. confragosa (Ach.) Kbr., R. arenaria (Hepp) Th. Fr.

Reinke, J. Abhandlungen über Flechten V. (Pringsh. Jahrb. 1896.

p. 289.) c. fig.

Im 1. Theil giebt Verf. allgemeine Gesichtspunkte, die für die natürliche

Anordnung des Klechtensystems massgebend sein sollen. Diese Ausführungen

sind nach mancher Richtung hin beachtenswerth und verdienen, dass auch die

Systematiker anderer Klassen des Pflanzenreiches sie lesen.

Der 2. Theil bringt dann die Uebersicht über das System, zu dem Reinke

gekommen ist. Es werden noch einmal die Gründe für die Anordnung kurz

auseinandergesetzt und bei den einzelnen Gruppen Tableaus gegeben, welche

die Phylogenese der Gattungen hervortreten lässt. Die Hauptgruppen des

Systems seien hier wiederholt:

1, Unterklasse: Coniocarpi. Fam. 12 Physciacei.

Fam. 1 Caliciacei. — 13 Theloschistacei.

Fam. 2 Acoliacei. — 14 Acarosporacei,

2. Unterklasse: Discocarpi. | 4. Reihe Cyanophili.

1. Reihe Grammophori. am. 15 Lichinacei.

Fam. 3 Graphidacei. | — 16 Ephebacei.

— 4 Xylographacei. — 17 Pannariacei.

2. Reihe Lecideales. — 18 Stictacei.

Fam. 5 Gyalectacei. — 19 Peltigeracei.

— 6 Lecideacei. — 20 Collemacei.

— 7 Umbilicariacei. | — 21 Ompbhalariacei.

— 8 Cladoniacei. 3. Unterklasse: Pyrenocarpi.

3. Reihe Parmehales. am. 22 Verucariacei.

Fam. 9 Urceolariacei. Anhang: Lichenes imperfecti Tham-

— 10 Pertusariacei. nolia, Siphula etc.

— 11 Parmeliacei.

Tonglet, A. Notize sur quinze Lichens nouveaux pour la flore de

Belgique. (Compt. rend. des scanc. de la Soc. roy. de bot. de

Belgique 1896. p. 80.)

Vill, A. Verzeichniss der in Unterfranken beobachteten Flechten.

(Ber. d. Bayr. l:ot. Ges. IV. 1896. p. 13.)

Aufzählung von 208 Flechtenarten mit genaueren Standortsangaben.

Aderhold, R. Cladosporium u. Sporidesmium auf Gurke u. Kürbis,

(Zeitschr. f, Pflanzenkr. 1896. p. 72.)

Verf. beschreibt genauer das Auftreten der Krankheit der Gurkenfrüchte,

welche von Cladosporium cucumerinum erzeugt wird. Die Erkrankung wurde

auf Freilandgurken künstlich erzeugt und verbreitete sich rasch auf ungeimpfte

Re 3

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(85)

Stöcke der Nachbarschaft. Kürbisse, welche eine ganz ähnliche Krankheit

zeigten, besassen ebnnfalls ein Cladosporium, das identisch mit dem der Gurken

zu sein scheint, obwohl Impfungen fehlschlugen. An Blattflecken beim Kürbis

wurde als Ursache der Fleckenbildung ein Sporidesmium gefunden, das vielleicht

neu ist. Auf Blattflecken der Gurken kam Sporid. mucosum var. pluriseptatum

zur Beobachtung. Ein Zusammenhang zwischen Clodosporium und Sporides-

mium liess sich auch in der Cultur nicht constatiren.

Allescher, A. Diagnosen einiger neuer, im Jahre 1895 gesammelter

Arten bayrischer Pilze aus der Abtheilung der Fungi imperfecti.

(Ber. d. Bayr. Bot. Ges. IV. 1896. p. 31.) N. A.

Bay, J. Chr. Is the red Torula a genuine Saccharomyces? (Centralbl.

f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 259.)

Verf. hält die Rosahefe für einen echten Saccharomyces.

Beach, S. A. Plum Leaf Spot, Cherry Leaf Spot and Fruit Rot.

(New York Agric. Exp. Stat. Bull. n. 98. 1896. Geneva.) c. tab. 5.

Die Arbeit bringt die Resultate von Bekämpfungsversuchen der durch

Cylindrosporium Padi verursachten Blattkrankheit. Es ergab sich als bestes

Vertilgungsmittel Bordeauxbrühe.

Brizi, U. Eine neue Krankheit (Anthracnosis) des Mandelbaums.

(Zeitschr. für Pflanzenkr. 1896. p. 65.) c. tab.

Die Krankheit tritt auf jungen Früchten auf, bildet auf der Oberhaut wund-

artige Vertiefungen, die sich schnell vergrössern und oft die ganze Frucht

durchlöchern. Wenn der Kern sich schon zu verholzen beginnt, richtet die

Erkrankung nur noch wenig Schaden an, während sie bei jungen Früchten die

Ernte vollständig vernichtet. Als Erreger erwies sich ein Pilz (Gloeosporium

amygdalinum n. sp.), der in Nährlösung gut wächst. Vorläufige Impfversuche,

die unter ungünstigen Verhältnissen angestellt werden mussten, gelangen nur

in einem Falle. Als Bekämpfungsmittel wird Bordeauxbrühe empfohlen.

Hallier, E. Die Hefe der Alkoholgährung, insbesondere der Biergährung.

Neue Untersuchungen. Mit 2 Taf. Weimar (C.Steinert) 1896. Pr.2M.

Hennings, P. Ueber eine auffällige Gallenkrankheit nordamerikanischer

Abies-Arten im Berliner Botanischen Garten, verursacht durch

l’estalozzia tumefaciens P. Henn. n. sp. (Verhandl. d. Bot. Ver.

d. Pr. Brand. 1895. p. XXVL)

Kayser, E. Contributions & l’etude des levures de vin. (Ann. de

l’Inst, Pasteur. 1896. n. 1. p. 51.)

Klöcker, A. u. Schiönning H. Experimentelle Untersuchungen über

die vermeintliche Umbildung verschiedener Schimmelpilze in Sac-

charomyceten. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 185.)

Die beiden Verff. haben sich der Mühe unterzogen, die Angaben Jörgensen’s

über die Umbildung von Dematium in Hefe genauer zu untersuchen. Dabei hat

sich herausgestellt, dass alle derartige Beobachtungen irrig sind. Weder bei

Dematium noch bei Aspergillus Oryzae sind jemals Umbildungen zu Hefezellen

gesehen worden. Jörgensen giebt neuerdings auch selbst zu, dass seine Beob-

achtungen wohl mehr auf Zufälligkeiten als auf zielbewussten Culturen beruhten.

in 4, 0 Sue

(86)

Lafar, F. Die künstliche Säuerung des Hefegutes der Brennereien,

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 194.)

Lindner, P. Mikroskopische Betriebskontrolle in den Gährungs-

gewerben mit einer Einführung in die Hefenreincultur, Infections-

!ehre und Hefenkunde. Berlin (P. Parey) 1895. Mit 4 Tafeln u:

105 Textfig.

Das vorliegende Buch soll nicht blos ein Nachschlage- und Handbuch für

den in der Praxis stehenden Brauer sein, sondern bereitet auch die Anfänger

durch methodische Uebungen zum selbstständigen Untersuchen vor.

Nach der Einleitung, welche eine Geschichte des Mikroskops und der

mikroskopischen Forschung giebt, beginnen im 1. Abschnitt in 7 Pensen ein-

getheilt die mikroskopischen Uebungen für den Anfänger. Es werden hier

hauptsächlich diejenigen Algen, Pilze und Thiere berücksichtigt, welche für das

Brauereigewerbe in Betracht kommen. Der 2. Abschnitt beschreibt die Ein-

richtung eines Laboratoriums für gährungsphysiologische Zwecke. Der 3. Ab-

schnitt ist den Cultur- und Untersuchungsmethoden der Pilze gewidmet. Es

werden hier also nicht blos die Apparate für Culturzwecke, sondern auch die

verschiedenen Isolirungsmethoden beschrieben und zugleich an Beispielen die

Anwendung der verschiedenen Methoden gezeigt. Abschnitt 4 schildert die Möglich-

keiten, durch die eine Infection im Betriebe veranlasst werden kann. Die 3

letzten Abschnitte endlich sind den speciellen Organismen gewidmet, welche

für praktische Zwecke wichtig sind oder die Schaden im Betriebe verursachen.

Hier kommen Schimmelpilze, Hefen und Bacterien in Betracht. Naturgemäss

wird den Hefen der weiteste Platz eingeräumt. Die einzelnen Organismen sind

theils in Textfiguren, theils auf den beigegebenen photographischen Tafeln ab-

gebildet.

Der Stoff, den das Buch bietet, ist ein äusserst reichhaltiger und vom Verf.

in anziehender Weise behandelt, so dass auch andere Kreise als die unmittelbar

daran interessirten Brauer aus dem Buche Belehrung und Anregung schöpfen

können. Grade die Methoden der Praktiker sind in den rein botanischen

Kreisen wenig bekannt, obwohl sie manchen Vortheil gewähren. Es sei deshalb

das Buch Jedem, der sich mit Pilzculturen beschäftigt, als Handbuch empfohlen.

Prillieux, EE Sur une maladie de la Chicorde, produite par le Phoma

albicans Rob. et Desm., forme pyenide de Pleospora albicans.

(Bull. de la Soc. Myc. de Fr. 1896. p. 82.) c. fig.

— Sur la penetration de la Rhizoctone violette dans les racines de

Betterave et de Luzerne. (Bull. de la Soc. Bot. de Fr. 1896. p. 9.)

c. fig.

Auffällig sind am Mycel der Rhizoctonia violacea kleine halbkuglige scel-

rotienartige Körper, die Tulasne „corps miliaires“ nennt und für Anfänge von

Perithecien ansieht. Auf die räthselhafte Natur dieser Körper richtet Verf. sein

Augenmerk. Die inneren Schichten eines solchen Körpers bestehen aus parallel

gelagerten Hyphen, deren Längsrichtung senkrecht zur Wurzeloberfläche ist.

Die Hyphen bohren sich also gleichsam mit festem Widerhalt am Sclerotiunı

in die Wurzel ein. Die Zellen der Rinde werden bei Seite geschoben und zer-

drückt. Entsprechend dieser Wirkungsweise hält Verf. die fraglichen Gebilde

für sclerotienartige Körper, welche das Eindringen der Hyphen in die Wurzel

erleichtern sollen,

(87)

Prunet, A. Les formes de conservation et d’invasion du parasite du

black-rot. (Compt. rend. €. XXI. 1896. p. 739.)

Der Pilz erhält sich im Winter durch Sclerotien, die sich auf dem faulenden

Theile der Weinstöcke finden. Wird also durch Verbrennen das Laub etc. ver-

nichtet, so ist die Gefahr der Neuinfection schr gering.

Renon. Attenuaton de la virulence des spores de l’Aspergillus fumi-

gatus dans les trös vieilles cultures. (Compt. rend. de la Soc. de

biol. 1895. n. 35. p. 799.)

Sorauer, P. Ueber eine in Ungarn aufgetretene Kartoffelkrankheit.

(Verhandl. d. Bot. Ver. d. Pr. Brand. 1895. p. XLIII.)

Erkrankung der Kartoffelblätter durch Alternaria Solani Sor.

Sturgis, W. C. Further experiments on the prevention of Potato-

scab. (19. Ann. Rep. of the Connecticut Agrie. Exp. Stat. for

1895. New Haven 1896. p. 166.)

Swingle, W. T. and Webber, H.J. The principal discases of Citrous

Fruits in Florida. (U.S. Dep. of Agric. Div. of Veget. Phys. and

Path. Bull. n. 8. Washington 1896.) c. tab. 8.

Die Krankheiten der verschiedenen Citrusarten in Florida haben in den

letzten Jahren eine derartige Ausdehnung gewonnen, dass der verursachte

Schaden ausserordentlich gross ist. Die vorliegende Arbeit deckt deshalb die

Ursachen der Krankheiten auf und giebt die Verhütungsmassregeln.

Orange blight. Die Ursache ist unbekannt. Die Krankheit steckt an, als

Verhütung kann nur die Vernichtung der erkrankten Bäume empfohlen werden.

Aehnelt den Peach-yellows.

Die-Back oder Exanthema. Die Zweige und Früchte der befallenen Bäume

bekommen kleine Auswüchse, die Frucht selbst wird unansehnlich dadurch.

Ursache unbekannt. Die beste Behandlung ıst die Nitrification des Bodens.

Scab oder Verrucosis. Früchte und Blätter zeigen kleine schwarze

Excrescenzen. Die Ursache ist ein Cladosporium,. Bekämpfung durch Bordeaux-

brühe.

Sooty Mold oder Smut. Auf Blättern und Früchten schwarze Ueberzüge

(Russthau).

Foot Rot oder Mal-di-Gomma. Gummifluss, namentlich am Grunde der

Bäume. Vielleicht durch Fusisporium limoni verursacht. Als wichtigstes Be-

kämpfungsmittel gilt Entfernung der Erde am Wurzelhals und Bestreichen der

ausgeschnittenen kranken Stellen mit antiseptischer Lösung.

Melanose. Braune Flecke auf Blättern und Früchten. Ursache nicht sicher

bekannt. Bekämpfungsmittel sind pilztötende Lösungen.

Tassi, F. Di Alcune Specie Nuove di Micromiceti. (Atti della R.

Accad. dei Fisiocrit. Siena. 4 ser. vol. VIII. 1896.) N. A.

— Altre Specie Nuove di Micromiceti. (Atti della R. Accad. dei

Fisiocrit. Siena. 4 Ser. vol. VII. 1896.) N. A.

Thiele, R. Die Temperaturgrenzen der Schimmelpilze in verschiedenen

Nährlösungen. Inaug. Diss. Leipzig (O. Schack) 1896. Pr. 1,50 M.

ui | Fu

(88)

Wehmer, C. Aspergillus Wentii, eine neue technische Pilzart Javas.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 140.) c. tab.

Der Pilz dient auf Java zur Herstellung der Soja. Verf. theilt das Ver-

halten des Pilzes auf verschiedenen Nährsubstraten mit und giebt eine genaue

Beschreibung.

— Ueber die Ursache der sogenannten Trockenfäule der Kartoffel-

knollen. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges, 1896, p. 101.) c. fig.

Nach Verf. wird die eigentliche Trockenfäule der Kartoffelknollen durch

Fusarium Solani (auch durch Spicaria Solani) erzeugt. Die Infectionen gelingen

in der ersten Hälfte des Winters in den meisten lällen, später nicht mehr.

Es würde also den Pilzen die primäre Ursache der Kartoffelfäule zuzuschreiben

sein, während die Bacterien erst secundär sein würden. Das würde gerade

eine Umkehrung der heutigen Ansicht sein,

VI. Moose.

Arnell, W. Moss-studier. (Botan. Notiser 1896. p. 97.)

Verf. behandelt den Formenkreis von Bryum capillare; aus Skandinavien

ist eine Anzahl von Varietäten bekannt, die kritisch gesichtet werden. Von

Bryum elegans Nees wird die neue Varietät norvegicum Kaurin et Arn. auf-

gestellt. Ferner wird noch Amblystegium glaucum var. decipiens behandelt,

Bagnall, J. EE The Mosses and Hepatics of Straffordshire. (Journ.

of Botany 1896. p. 72, 108.)

Aufzählung der in Straffordshire bisher beobachteten Laub- und Lebermoose.

Best, &. N. Revision of the North American Thuidiums. (Bull,

Torrey Bot. Club 1896. p. 78.) c. tab. 2.

Die vorhandenen Arten sind folgende: 1. aus der Untergattung Euthuidium,

T. pygmaeum Br. et Sch., T. minutulum (Hedw.) Br. et Sch., T. scitum (P. B.)

Aust., T. recognitum (Hedw.) Lindb., T. Philiberti Limpr., T. delicatulum (L.)

Mitt., T. abietinum (L.) Br. et Sch., T. virginianum (Brid.) Lindb., T. micro-

phyllum (Sw.) Best; 2. aus der Untergattung Heterothuidium, T. Blandowii (W. et

M.) Br. et Sch., T. paludosum (Sull.) Rau et Herv.

Bureau, E. et Camus, F. L.es Sphaignes de Bretagne. (Rull. de la

Soc. des scienc. natur. de l’Ouest de la France, VI. 1896, p. 31.)

Förster, J. B. Beiträge zur Moosflora der Comitate Pest-Pilis- Solt

und Gran. (Verhandl. d. z. b. Ges, Wien 1896. p. 165.)

Aufzählung von 19 Leber- und 169 Laubmoosen des Gebietes.

Goebel, K. Archegoniatenstudien VII. Hecistopteris, eine verkannte

Farngattung. (Flora vol. 82. 1896. p. 67.) c. fig.

Die als Gymnogramme pumila beschriebene Farnart weicht im Bau ihrer

Prothallien wesentlich von denen anderer Arten der Gattung ab. Dadurch,

dass einzeln liegende sclerenchymatische Zellen vorhanden sind, nähert sich die

Art im Bau den Prothallien von Vittaria, Monogramme etc. Goebel begründet

nun ausführlich, dass Gymnogramme pumila als besondere Gattung abzutrennen

ist mit dem älteren Smithschen Namen Hecistopteris pumila.

(89)

Holzinger, J. M. Some Muscineae of the Northern boundary of Minne-

sota, collected by Convay Macmillan, during 1895. (Minnesota

Bot. Stud. Bull. 9. n. 8. p. 579.)

Aufzählung von 6 Lebermoosen und 46 Laubmoosen,

— Notes on the Moss Flora of Minnesota. (l. c. p. 590.)

Aufzählung von 77 Laubmoosen.

Howe, M. A. Notes on Californian bryophytes II. (Erythea 1896.

p. 48.)

Angabe von Standorten für eine Anzahl von californischen Laub- und

Lebermoosen,

Kaiser, P. Beiträge zur Kryptogamenflora von Schönebeck a. E. I.

(Wiss. Beilage zum Jahresp. des Realprogymnas. zu Schönebeck

a. E. 1896.)

Knabe, C. A. Zwei neue Bürger der Laubmoosflora Böhmens.

(Allgem. Botan. Zeitschr. II. 1896. p. 62.)

Liotard, P. V. La flore bryologique des environs de Borne (Haute-

Loire). (la Monde des Plantes V. 1896. p. 66.)

Massalongo, C. Le specie italiane del genere Jungermannia. (Aktti

della Soc. Ven.-Trent. di Sc. Nat. 2 ser. 2 vol. 2 fasc. 1895.)

Die vorliegende Arbeit bringt eine Monographie der italienischen Arten des

Genus Jungermannia; die Zahl der bekannten Species beträgt 26, wozu noch

zahlreiche Varietäten kommen. Jede Art wird genau beschrieben und ihre

Verbreitung genau angegeben. Zahlreiche Anmerkungen bringen Unter-

scheidungsmerkmale gegenüber nichtitalienischen Arten. Wichtig ist auch die

Bestimmungstabelle am Schluss der Arbeit.

— Rivista epaticologica italiana. (Malpighia 1896. p. 196.)

Müller, F. Beiträge zur Moosflora der ostfriesischen Inseln Baltrum

u. Langeoog. (Abh. des naturw. Ver, zu Bremen XIII. 1896.

p. 375.)

Pe’sson, J. Bidrag till Vestergötlands och Bohusläns mossflora,

(Botan. Notiser 1896. p. 81.)

Aufzählung von Laub- und Lebermoosen,

Renauld, F. et Cardot, J. Musci exotici novi vel minus cogniti.

(Compt. rend. des scances de la Soc. roy. de botan. de Belgique

1896. p. 57.)

Trautmann, C. Beitrag zur Laubmoosflora von Tirol. (Oester. botan.

Zeitschr. 1896. p. 139.)

Aufzählung von 36 Arten,

Weidmann, A. Prodromus der böhmischen Laubmoose Theil I. I.

Prag. (Alois Wiesner) 1890.

rare

(90)

VII. Pteridophyten.

Arcangeli, 6. Il.a flora del Rotliegenden di Oppenau e le formazioni

di 5. Lorenzo nel Monte Pisano. (Bull. della Soc. Bot. Ital. 1896. p. 85.)

Ascherson, P. Vorlage von Scolopendrium hybridum, Asplenum

trichomanes X ruta muraria etc. (Verhandl. d. Bot. Ver. d. Prov.

Brand. 1895. p. XLVi.)

Bornmüller, J. Zur Flora Tessins. (Bull. de ’Herb. Boiss. 1896. p. 145.)

Am Schluss auch Pteridophyten aufgezählt.

Clute, W.N. Ferns and Fern-Lore. (Commercial Trav. Home Magaz.

VI. 1896. p. 271.)

De Cordemoy, E. ct De Cordemoy, H. J. Sur le polymorphisme de

l"Asplenium lineatum Sw. (Rev. gender. de Botan. 1896, p. 81.)

ESS 2

Classificirung der verschiedenen Variationsformen des Farns.

Gibson, R. J. H. Contributions towards the Knowledge of the Ana-

tomy of the genus Selaginella II. (Ann. of Botany 1896. p. 77.)

c. tab.

% Die vorliegende Arbeit bringt die Entwickelungsgeschichte der Ligula.

Holzinger, J. M. Determinations of Plants collected by Dr. J. H.

Sandberg, in Northern Minnesota, During 1891. (Minnesota Bot.

Stud. Bull. 9 n. 8. 1896. p. 517.)

Aufgenommen ist eine Anzahl von Gefässkryptogamen.

Hope, C. W. Ferns of the Chitral Relief Expedition. (Journ. of Ra)

1896. p. 122.)

Aufzählung der während der Chitralexpedition im Himalaya gesammelten

Farne. Neu ist Asplenium Mackinonni.

Jonkman, H. F. Embryogenie von Angiopteris u. Marattia. (Bot.

Centralbl. LXVI. 1896. p. 49.)

Mittheilungen über die Entwickelung der Embryonen von Angiopteris und

Marattia.

Kuntze, 0. Nomenclatorische Bemerkungen zu Ascherson’s Artikel

über Equisetum Heleocharis. (Oester. botan. Zeitschr. 1896. p. 183).

Lübstorf, W. Pflanzentabellen zur leichten u. schnellen Bestimmung

der Phanerogamen und Gefässkryptogamen Norddeutschlands.

Wismar 1895. (Hinstorffsche Hofbuchhandl.) geb. Pr. 2 M.

Das Buch erscheint für Schulzwecke recht brauchbar. Die knappe kurze

Fassung des Textes und die übersichtliche Anordnung der Tabellen erleichtern

das Bestimmen ungemein. Obwohl das Buch speciell für Mecklenburg bestimmt

ist, kann es doch auch für die Schulen der angrenzenden Provinzen empfohlen

werden, da der Pflanzenbestand Norddeutschlands vollständig aufgenommen

worden ist,

(91)

Meyer, A. Das Irrthümliche der Angaben über das Vorkommen

dicker Plasmaverbindungen zwischen den Parenchymzellen einiger

Filicineen u. Angiospermen. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1896.

p. 154.) c. tab.

Verf. weist nach, dass die für Struthiopteris und Pteris angegebenen Plasma-

verbindungen zwischen den Zellen nur die verbogene und deshalb verkannte

Schliesshaut der Tüpfel ist.

Simmons, H. G. Nägra bidrag till Färöarnes flora I. (Bot. Notiser

1896. p. 65.)

Nur 2 Pteridophyten genannt.

Small, J. K. Studies in the Botany of the Southeastern United

States. (Bull. Torrey Bot. Cl. 1896. p. 125.)

Nur ein Farn genannt.

Valentine, C. $. Habits of Ferns. (Gard. and Forest IX. 1896. p. 68.)

Whitwell, W. Montgomeryshire Notes. (Journ. of Bot. 1896. p. 172.)

Einige Farne genannt.

Williamson, W. C. and Scott, D. H. Further observations on the

organization of the fossil plants of the coal measures Ill. Lygi-

nodendron and Heterangium. (Philos. Trans. of. the R. Soc. of

London CLXXXVI. 1896. p. 703.) c. tab. 12. Pr. 6 sh.

Wulff, Th. Some remarks on the flora of the Isle of Wight, England.

(Botan. Notiser 1896. p. 53.)

Am Schluss auch Pteridophyten genannt.

Zeiller, R. Sur l’attribution du genre Vertebraria. (Compt. rend.

CXXII. 1896. p. 744.)

Die Gattung Vertebraria stellt nur die Rhizome von Glossopteris dar.

Sammlungen.

Collins, F. S., Holden, J. and Setchell, W. A. Phycotheca boreali-ameri-

cana. Fasc. IV.

151. Gloeocapsa Magnum (Breb.) Kütz.; 152. Entophysalis granulosa Kütz.;

153, Microcoleus chthonoplastes Thur.; 154. Oscillatoria prolifica (Grev.) Gom.;

155. Arthrospira Gomontiana Setch.; 156. Isactis plana (Haw.) Thur., 157. Rivu-

laria Bornetiana Setch.; 158. Microchaete grisea Thur.; 159. Dimorphococcus

cordatus Wolle; 160. Epicladia Flustiae Reinke; 161. Aphanochaete vermicu-

loides Wolle; 162. Acroblaste Reinschii Wille, 163. Oedogonium acrospermum

De Bary; 164. Cladophora aegagropila (1..) Kütz.; 165. Codiolum gregarium A. Br.;

166. Vaucheria littorea Nordst.; 167. Halimeda Tuna (Ell. et Sol.) Lam.;

168. Codium tomentosum (Huds.) Stackh.: 169. Anadyomene stellata (Wulf.) Ag.;

170. Dasycladus clavaeformis (Roth) Ag.; 171. Pylaiella littoralis (L.) Kjellm.;

172. Sphacelaria tribuloides Menegh.; 173. Ascocyclus orbicularis (J. Ag.) Magn.;

174. Scytosiphon lomentarius var. complanatus Rosenv.;, 175. Mesogloea divarj-

cata (Ag.) Kütz.; 176. Pelvetia fastigiata (J. Ag.) De Toni, 177. Ascophyllum

(92)

Mackaii (Turn.) Holm. et Balt.; 178, Sargassum vulgare Ag.; 179. S. Agardhianum

Farl.; 180. Batrachospermum moniliforme (Roth) Sirod.; 181. B. Decaisneanum

Sirod.; 182. B. radians Sirod.:; 183. B. Corbula Sirod.; 184. B. densum Sirod.;

185. B. pyramidale Sirod.; 186. B. Boryanum Sirod.; 187. B. vagum Ag, var. flagelli-

forme Sirod.; 188. var. keratophytum (Bory) Sirod.; 189. B. coerulescens Sirod.;

190. B. virgatum Sirod.; 191. Chantransia corymbifera Thur.; 192, Nemalium

multifidum (Web. et Mohr) J. Ag.; 193. Sciania fuscellata (Turn.) Biv.; 194, Geli-

dium crinale Ag.; 195. Hypnca musciformis (Wulf,) Lam.; 196. Spermothamnion

Turneri (Mart.) Aresch.; 197. Ceramium squarrosum (Harv.) J. Ag.; 198. Prionitis

lanceolata Harv.; 199, Melobesia farinosa Lam.

Roumeguere, C. Fungi exsiccati praecipue Gallici LXX. cent. (Rev.

mycol. 1896. p. 71.)

Die Centurie enthält auch eine Reihe von Neuheiten, welche Fautrey und

Lambotte in den letzten Heften der Rev. myc. beschrieben hat.

Krieger, K. W. Fungi saxonici exs. Fasc. 23. N. 1101-1150.

1101. Protomyces Bellidis Krieg. n. sp.; 2 u. 3. Entyloma Bellidis Krieg. n.

sp. Conidien, Dauersporen.; 4. E. Brefeldi Krieg. n. sp. Phalaris arundinacea;

5. Doassansia Limosellae (J. Kunze) Schröt.; 6. Uromyces Pisi (Pers.) De Bary.

Lathyrus silvestris; 7. Puccinia obscu:a Schröt. Aecid. Bellis perennis; 8, 9. Melamp-

sora Hypericorum (DC.) Schröt. Hypericum humifusum und H. quadrangulare;

10. M. Circaeae (Schum.) Wint.; 11. M. Tremulae Tul.; 12, 13. M. populina (Jacq.)

Lev. Populus balsamifera; 14. Thelephora palmata (Scop.) Fr.; 15. Polyporus

frondosus (Fl. Dan.) Fries; 16. P. lucidus (Leys.) Fr.; 17, 18. Epichlo&@ typhina

(Pers.) Tul. Calamagrostis Halleriana u. Poa; 19, Laestadia Buxi (Fuck.) Sacc.;

20, 21. Leptosphaeria Coniothyrium (Fuck.) Saec. Rubus Idaeus et R. caesius;

22. Didymosphaeria superflua (Auerw.) Niessl.; 23, Rosellinia pulveracea (Ehrh.)

Fuck.; 24. Gnomonia Rosae Fuck.; 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31. Diatrype Stigma

(Hoffm.) Fr. Crataegus, Rosa, Prunus spinosa, Sorbus Aucuporia, Alnus, Corylus,

Quercus; 32. Trochila Astragali Rehm n. sp. Astragalus glycyphyllos; 33. He-

terosphaeria Patella (Tode) Grev.; 34, Ombrophila limosella (Karst.) Rehm;

35. Rhyparobius crustaceus (Fuck.) Rehm; 36. Rhyparobius polysporus Karst.;

37. Leotia gelatinosa Hill.,; 38. Gloeosporium acerinum West.; 39, 40. Gl, betu-

linum West.; 41. Gl. Carpini (Lib.) Desm.; 42, Gl. Fagi (Desm.) West.; 43. Gl.

nervisequum (Fuck.) Sacc.; 44. Gl. Platani (Mont.) Oud.; 45. Gl. paradoxum (De

Not.) Fuck.; 46. Gl. phaeosorum Sacc.; 47, 48. Gl. Ribis (Lib.) Mont. et Desm.;

49. Gl. Tiliae Oud.; 50. Gl. umbrinellum Berk. et Br.

W. Krieger. Schädliche Pilze unserer Culturgewächse, gesammelt und

herausgegeben. Fascikel I. No. 1-50, Königstein 1896. Preis

10 M. bei Bezug vom Autor.

Der durch die Fungi saxonici als sorglältiger und scharfsichtiger Pilzsammler

wohl bekannte Herausgeber hat sich die Aufgabe gestellt, die durch parasitische

Pilze hervorgebrachten Krankheiten unserer Culturgewächse in charakteristischen

und gut getrockneten Exemplaren als Hilfsmittel beim Unterrichte zur An-

schauung zu bringen. Jedem Pilze ist eine Etikette beigegeben, auf der ausser

dem Namen die wichtigsten Synonyme nebst Literatur, sowie der deutsche

Name des Pilzes oder der Krankheit, wo ein solcher vorhanden ist, stehen.

Dann folgt eine kurze allgemein verständlich gehaltene Beschreibung, der noch

die wichtigsten Abwehrmittel gegen die Krankheit beigefügt sind; schliesslich

werden der Standort des ausgegebenen Exemplars und die Zeit, zu der es da-

selbst gesammelt worden ist, angegeben,

(93)

Die Pilze sind durchweg in guten instructiven Exemplaren ausgegeben,

meist aufgeklebt, so dass die Blätter unmittelbar herumgereicht werden können.

Nur in wenig Fällen, wie bei den stäubenden Brandarten oder den leicht heraus-

fallenden Mutterkörnern, sind sie in Kapseln eingeschlossen, die dann beim

Herumreichen geöffnet werden müssen.

Von den Pilzarten, die verschiedene Fruchtformen haben, sind dieselben

öfter ausgegeben, so von Phragmidium subcorticium (Schrank) Wint. das

Aecidium, die Uredo- und Teleutosporen, von Gymnosporangium Sabinae (Dicks.)

Wint. das Aecidium und die Teleutosporen, von Sphaerotheca Castagnei Lev.

auf dem Hopfen die Conidien und Perithecien, von Claviceps purpurea die

Sclerotien in den Aehren des Roggens und der Gerste und das überwinterte

und zu den die Perithecien tragenden kopflörmigen Stromata ausgekeimte

Sclerotium.

Im vorliegenden, 50 Arten umfassenden Fascikel sind namentlich zur Ausgabe

gelangt die meisten Brandarten des Getreides, Ustilago perennans auf Arrhena-

therum elatius, Urocystis Violae auf Viola odorata, Puccinia Malvaccarum auf

Althaea rosea Cav., das schon erwähnte Phragmidium subcorticium auf Re-

montant-Rosen, Gymnosporangium Sabinae auf Juniperus Sabina und Pirus

communis, Exoascus Cerasi (Fckl.) Sadeb. auf Prunus avium, Exoascus defor-

mans (Berk.) Fckl. auf Persica vulgaris, mehrere Erysipheen, worunter auch

Oidium Tuckeri Berk. auf Vitis vinifera, Polystigma rubrum auf Prunus do-

mestica, Epichlo@ typhina avf Calamägrostis, Lophodermium macrosporum

(Hartig) Rehm auf Picea excelsa, Cenangium Abietis (Pers.) Rehm auf Pinus

silvestris, Dasyscypha Willkommii Hart. auf Larix europaea, Pseudopeziza Tri-

folii (Bernh.) Fckl. auf Trifolium pratense, Phytophthora infestans (Mnt.) de By.

auf Solanum tuberosum, Plasmopara viticola (Berk. et Curt.) Berl. et de Toni,

Plasmopara nivea auf Pastinaca sativa, Microstroma luglandis (BEr.) Sacc. auf

luglans regia, Cercospora concors (Casp.) Sacc. auf Solanum tuberosum, Cer-

cospora beticola auf Beta vulgaris, Cercospora Resedae Fckl. auf Reseda odorata,

Fusicladium dentriticum (Wallr.) Fckl. auf Pirus Malus, Actinonema Rosae (Lib.)

Fr. auf Remontant- Rosen, Gloesporium nervisequum (Fckl.) Sacc. auf Platanus

orientalis, Gloeosporium Ribis (Lib.) Mont. et Desm. auf Ribes rubrum, Colleto-

trichum oligochaetum Cav. auf Cucumis vulgaris, Marsonia luglandis (Lib.) Sacc.

auf Iuglans regia, Polyporus hispidus (Bull.) Fr. auf Pirus Malus, Polyporus

igniarius (L.) Fr. auf Pirus Malus und Claviceps purpurea (Fr.) Tul. auf Sccale

cereale L. und Hordeum distichum.

Aus den zum grössten Theile hier aufgezählten Nummern geht hervor, dass

der Herausgeber praktisch wichtige Krankheiten der Culturpflanzen bringt, und

dass aus denselben die verschiedensten Arten, wie Brand, Rost, Fleckenkrank-

heiten, Schimmel, Mehlthau u. s. w. schon in diesem Fascikel vertreten sind.

Der Herausgeber liefert daher mit diesem Exsiccatenwerke ein wichtiges

Unterrichtsmittel, das sowohl dem Lehrer, wie dem Lernenden die besten

Dienste leitet. Er bietet zugleich mit dem guten Exemplare des Objectes das

Wissenswertheste über dasselbe in leicht verständlicher Darstellung mit kurzer

Hervorhebung der besten praktischen Maassregeln gegen die Krankheit. Es

wird daher auch praktischen Landwirthen und Gärtnern zur Selbstbelehrung

von grossem Nutzen sein.

P. Magnus.

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(94)

Eine sachliche Erwiderung.

Von P. Magnus.

Im Repertorium für kryptogamische Literatur der Hedwigia Bd. XXXV.

1896. S. 38) führt der Ref. in nicht sehr klarer Weise (er nennt es ein Um-

taufen der Wallroth’schen Bezeichnung, während es sich um die Voranstellung

des älteren Wallroth’schen Namens im Gegensatze zu dem bisher gebrauchten

späteren Perid. corticola (Rabenhorst) handelt, wie es auch Ref. nach seinen

späteren Worten verstanden hat) an, dass ich den älteren Namen Peridermium

Pini 3 truncicola Wallr. hervorgesucht habe, und meint, dass ein derartiges

Hervorsuchen des ältesten Namens bei Peridermien ohne praktischen Werth

sei, weil sich doch nicht feststellen liesse, welche von den heute nach dem

Zwischenwirthe unterschiedenen Peridermien Wallroth vorgelegen haben. Mir ist

es überhaupt ganz neu, dass das Hervorsuchen ältester Namen einen prak-

tischen Werth haben soll; mir hat es immer nur den historisch - wissenschaft-

lichen Werth gehabt. Mir scheint der Ref. aber ausserdem meine Ausführung

nicht ordentlich gelesen zu haben. Denn ich sage dort ausdrücklich, dass,

obwohl ich die stammbewohnenden Peridermium-Formen z. Th. selbst mit

unterschieden habe, ich sie einstweilen ohne Kenntniss der zugehörigen Form

nicht unterscheiden kann, und grade deshalb zur allgemeinen Bezeichnung

der am Stamme von Pinus silvestris auftretenden Peridermien die älteste eigene

Bezeichnung derselben, die Wallroth'sche, festhalte. Und wenn überhaupt das

Voranstellen älterer Bezeichnungen irgendwo einen Sinn hat, so ist es hier, wo

Wallroth seine Form Peridermium Pini Willd. # truncicola Wallr. mit den Worten

sporidochiis speciosis vesicatis (Flora cryptogamica Germaniae II. Nürnberg 1833.

S. 263) mindestens ebenso kenntlich, wie Rabenhorst sie 1844 als corticola be-

schrieben hat. Ich sagte in der referirten Schrift, dass wir heute das auf dem

Stamme von Pinus silvestris wohnende Peridermium von dem die Nadeln be-

wohnenden trennen müssen, und deshalb eben als Peridermium truncicola

(Wallr.) P. Magn. zu bezeichnen haben. Auch heute ist noch meine Meinung,

dass das stammbewohnende Peridermium als allgemeine morphologisch wohl

umschriebene Form von dem blattbewohnenden getrennt werden muss, wozu

ich eben die Wallroth’sche als allgemeine Bezeichnung der Form wähle, wenn

ich sie ohne Kenntniss des zugehörigen Zwischenwirthes nicht näher bezeichnen

kann. Nun hat aber P, Vuillemin (vgl. Zeitschrift für Pflanzenkrankheiten, heraus-

gegeben von P. Sorauer. Bd. VI. 1896. S. 49) behauptet, dass die nadeln- und

rindenbewohnende Form von Peridermium Pini identisch sei, eine Ansicht, der

ich in dieser Allgemeinheit nicht beistimmen kann. Er nimmt (nach dem citirten

Referate von F. Noack) an, dass nur die Nadeln inficirt werden und das Mycel

von dort in die Zweige übergeht. Gelangt es dorthin, ehe der Pilz zur Fruc-

tification übergeht, so entstehe nur die forma corticola und so erkläre sich die

Seltenheit der forma acicola. In dieser Allgemeinheit ist Vuillemin’s Ansicht

jedenfalls nicht giltig. Sollte sich aber bestätigen, dass Peridermium der Nadeln

in den Stamm übergehen kann — und dies würde Resultate älterer Impfversuche

von R. Wolff und mir erklären —, so würde die allgemeine Bezeichnung eines

Peridermiums, dessen Zwischenwirth man nicht kennt, nur Peridermium Pini

(Willd.) lauten können.

Bemerkung zu vorstehender Erwiderung.

In der referirten Schrift schreibt P. Magnus: „... Dies ist meines Wissens

das erste Mal, dass die stammbewohnende Form des Peridermium Pini Willd.

von der blattbewohnenden acicola Wallr. unterschieden .... wird. Raben-

horst unterschied sie später 1844 als « corticola, unter welchem Namen sie oft

(95)

genannt wird. Ich hatte darauf hingewiesen, dass es ausser dem im Stamme

von Pinus silvestris L. lebenden Peridermium, von dem Cornu nachgewiesen

hatte, dass es zu Cronartium asclepiadeum auf Cynanchum Vincetoricum ge-

hört, noch ein zweites nicht zu diesem gehörendes Peridermium im Stamme

von Pinus silvestris L. geben müsse, und Klebahn hat darnach zwei stamm-

bewohnende Arten von Peridermium auf Pinus silvestris L. unterschieden, je

nach dem sie zu Cron. asclep. gehören (P. Cornui Kleb.) oder nicht (P. Pini

[Willd.]) Kleb.). Da ich sie aber einstweilen ohne Kenntniss der zugehörigen

Teleutosporenform nicht im Sinne Klebahns unterscheiden kann, so halte ich

zur Bezeichnung der am Stamme von Pinus silvestris L. auftretenden Peridermien

die älteste eigene Bezeichnung derselben, die Wallroth'sche, fest: Per. truncicola,

das wir aber heute als nicht zu den die Nadeln von Pin. silv. bewohnenden

Per.- Arten gehörig bezeichnen müssen.‘

Bei der vorstehenden Erwiderung auf das Referat dieser Stelle möchte

ich zwei Punkte scharf trennen, das ist einmal die Bestimmung des fraglichen

Pilzes als Perid. truncicola und zweitens die Bezeichnung mit dem Wallroth’schen

Namen.

Was den ersten Punkt betrifft, so giebt Magnus selbst zu, dass er ohne

die Nährpflanzen der Teleutosporenform die beiden stammbewohnenden Per.

Cornui und Per. Pini nicht trennen kann. Wenn er trotzdem den Pilz als Per.

truncicola bezeichnet, so gesteht er damit offen ein, dass diese Art aus 2 ge-

trennten Arten besteht, welche man freilich nicht unterscheiden kann. Ich will

über die Berechtigung, zwei Arten ohne morphologische Merkmale zu unter-

scheiden, hier nicht streiten, sondern möchte nur meine Meinung dahin aussprechen,

dass ich es für unstatthaft und der Wissenschaft nicht förderlich halte, wenn die

schwankende Bestimmung schwer unterscheidbarer Arten dadurch verdeckt

wird, dass man die beiden unter einer Flagge segeln lässt. Nach der bei den

Phanerogamenforschern üblichen Weise wäre in solchem Falle entweder Peri-

dermii spec. oder Peridermium Pini vel Cornui zu setzen. Und diese Art der

Bezeichnung halte ich für die einzige wissenschaftlich zulässige, denn hier wird

offen herausgesagt schon durch die Wahl der Bezeichnung, dass die Bestimmung

dubiös ist.

Der zweite Punkt betrifft das Hervorsuchen des älteren Wallroth’schen

Namens. Dass dieser Name als ein mixtum compositum nach dem heutigen

Stand der Wissenschaft werthlos ist, brauche ich wohl kaum weiter zu begründen.

Weshalb aber wird denn nun statt der bisher üblichen Rabenhorst’schen Be-

zeichnung corticola dieser Name hervorgesucht? Aus „historisch-wissenschaft-

lichen“ Gründen! Ich will nicht in Abrede zu stellen versuchen, dass diese für

Magnus allein massgebend waren; für mich persönlich hat die Nomenclatur

als solche überhaupt keinen wissenschaftlichen Werth. Die Namensgebung

soll lediglich practischen Zwecken dienen und fördert allerdings dadurch, dass

sie feste Bezeichnungen schafit, die Wissenschaft indirect sehr. Es ist völlig

gleichgültig, ob eine Art so oder so heisst, nicht gleichgültig aber ist es, ob sie

häufig den Namen ändert. Ob das Peridermium daher mit dem Rabenhorst'-

schen oder Wallroth’schen Namen bezeichnet wird, ist mir ganz irrelevant,

nothwendig ist nur, dass beide Namen verschwinden, da sie nichts einheitliches

bezeichnen.

Da sich die Differenz zwischen Magnus und mir lediglich auf die subjective

Auffassung von dem Werthe der Nomenclatur zuspitzt, so betrachte ich mit

meinen obigen Ausführungen, die ich niemandem aufzwingen will, für mich die

Sache als vollständig erledigt.

G. Lindau,

(96)

Personalnotisen.

Es starb der Lichenologe J. Richard in Pas-de-Jeu am 15. Januar.

Prof. Dr. E. Köhne, Friedenau, Kirchstr. 5, bittet um Zusendung

von Veröffentlichungen aus allen Gebieten der Botanik zur Her-

stellung von Just’s Botanischen Jahresbericht. Um ein schnelleres

Erscheinen des Jahresberichtes und eine grössere Vollständigkeit zu

erzielen, ist es nothwendig, dass die Autoren mehr als bisher das

verdienstvolle Werk durch Uebersendung ihrer Arbeiten unterstützen,

Dr. V. Schiffner wurde zum ausserordentlichen Professor der

systematischen Botanik an der deutschen Universität Prag ernannt.

Dr. A. J. Grevillius wurde Assistent am botanischen Institut

der Akademie Münster i. W

Dr. J. Briquet wurde an Stelle des verstorbenen Prof. Dr. J. Müller

zum Director des botanischen Gartens in Genf ernannt.

Prof. Dr. M. Treub ist nach Buitenzorg zurückgekehrt.

Prof. Dr. Solla hat eine Lehrerstelle an der k. k. Staatsober-

realschule in Triest angenommen.

Dr. F. Cavara wurde an die Forstakademie zu Vallombrosa

berufen.

Es starb der englische Phykologe T. H. Buffham.

Dr. M. Raciborski geht als Assistent nach dem botanischen

Garten zu Buitenzorg auf Java.

Der botanische Verein der Provinz Brandenburg hat beschlossen,

Vorbereitungen zu einer Kryptogamenflora der Mark zu treffen. Zu

diesem Zweck ist eine Commission ernannt worden, die besteht aus:

P. Hennings-Berlin, G. Hieronymus-Berlin, R. Kolkwitz-

Berlin, G. Lindau-Berlin, F. Ludwig-Greiz, A. Möller -Ebers-

Ruppin. Mittheilungen oder Anfragen sind an den Vorsitzenden

G. Lindau oder den Schriftführer R. Kolkwitz zu richten.

Dr. H. Schenck in Bonn und Dr. C. Müller in Charlottenburg

erhielten den Titel Professor.

Redaetion: Prof, Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von Paul Hennings und Dr, G. Lindau in Berlin.

Druck und Verlag von C. Heinrich in Dresden.

Repertorium

für

kryptogamische Literatur

Beiblatt zur „Hedwigia“.

Band XXXV. jJuli—Octobe. 1896. Nr. 4/5.

I. Allgemeines und Vermischtes.

Arcangeli, G. Sopra varii funghi ed un’ alga raccolti dal P. Giraldi

nella Cina. (Bull. della Soc. Bot. Ital. 1896. p. 183.)

Aufzählung einer Anzahl von Pilzen und einer Alge aus China, darunter N. A.

Ascherson, P. Synopsis der mitteleuropäischen Flora. Leipzig (G.

Engelmann) 1896. Lief. 1.u. 2.22 M.

Boh&me, Ch. M. Pasteur: le savant, ’homme. Nevers (Valliere) 1896.

Boutroux, L. Pasteur, discours lu ä l’Acaddmie des sc., bell. lett, et

art. de Besangon 6 fev. 1896.

Buchenau, F. Flora der ostfriesischen Inseln. Leipzig (W. Engel-

mann) 1896. 3. Aufl.

Die Einleitung bringt eine Schilderung der Vegetation nach ihren einzelnen

Formationen. In dem speciellen Theil sind die Pteridophyten aufgenommen. Als

Anhang wird eine Aufzählung der Laubmoose (98 Arten), der Lebermoose (19)

und der Flechten (131) gegeben. Die Moose sind von Fr. Müller-Varel und die

Flechten von H. Sandstede-Zwischenahn zusammengestellt.

Casteig. Pasteur et son oeuvre. Pau (Vignaucour) 1896.

Chappuis, C. Pasteur. (L’Annuaire de l’assoc. des anciens elöves de

l’Ecole norm. super. 1896.)

Cramer, C. Leben und Wirken von Carl Wilhelm von Nägeli. Zürich

(F. Schulthess) 1896. Mit Portr. 2 M.

Crato, E. Beiträge zur Anatomie und Physiologie des Elementar-

organismus. (Cohn’s Beitr, zur Biol. der Pfl. VII. 1896. p. 407.)

c. tab. 4.

Verf. führt seine Physodentheorie näher aus. Die umfangreiche Arbeit ent-

hält die Untersuchungen von Algen, Pilzen und höheren Pflanzen; in Bezug auf

die Resultate muss auf die Untersuchungen selbst verwiesen werden.

Loesener, Th. Beiträge zur Kenntniss der Flora von Central-Amerika.

(Engler’s Jahrb. XXIII. 1896. p. 109.)

Bearbeitung einer Sammlung von Rothschuh aus Nicaragua. Darunter

werden einige Lebermoose und Selaginellen genannt.

Hedwigia Ba, XXAV, 1896. 9

, ..3pi2 ri

(98)

Männel. Die Moore des Erzgebirges und ihre forstwirthschaftliche und

nationalökonomische Bedeutung mit besonderer Berücksichtigung

des sächsischen Antheils. (Forstl. naturw. Zeitschr. 1896. p. 325.)

Unter Anderem enthält die Arbeit eine Aufzählung der in den Mooren ge-

fundenen Pflanzen, darunter Moose, Algen und Flechten.

Marchall, E. $. Irish plants observed in July 1895. (Journ. of Botan.

1896. p. 250.)

Auch Gefässkryptogamen und Characeen genannt.

Pringsheim, N. Gesammelte Abhandlungen Bd. III. Jena (G. Fischer)

1896. Mit 13 Taf. Pr. 12 M.

Reess, M. Lehrbuch der Botanik. Stuttgart (F. Enke) 1896. Pr. 10 M.

Römer, H. Hermann Hellriegel. (Zeitschr. für Naturwissenschaften 1896.)

Schumann, K. und Gilg, E. Das Pflanzenreich ein Hausschatz des

Wissens. Abth. V. Bd. 7. Mit 500 Fig. u. 6 bunten Taf. Neu-

damm (J. Neumann) 1896. geb. 7,50 M.

Obwohl an kleinen Lehrbüchern der Botanik kein Mangel herrscht, fehlte

doch noch ein Buch, das die gesaminte Botanik in anziehender und fesselnder

Weise behandelte. Diese Lücke füllt das gegenwärtige Handbuch in vorzüg-

licher Weise aus. Es bietet nicht blos einen kurzen Abriss der gesammten

Zweige der Botanik, sondern versteht auch durch die glänzende Art der Dar-

stellung das spröde Material der Systematik und Anatomie dem Leser interessant

zu machen. Es wird deshalb berufen sein, in Laienkreisen unsere Wissenschaft

wieder einzubürgern, die durch die abstracte Darstellung anderer Lehrbücher

viel von ihrer früheren Popularität eingebüsst hat.

Der reiche Inhalt des Werkes gliedert sich in eine historische Einleitung,

auf die eine Schilderung des inneren Baues der Pflanze und der Functionen

ihrer einzelnen Gewebe folgt. Gerade dieses Kapitel wird dem Laien ausser-

ordentlich viel Interessantes bieten, da diese Zweige unserer Wissenschaft

weiteren Kreisen beinahe gänzlich unbekannt sind. Den Haupttheil des Buches

nimmt die Schilderung der einzelnen Abtheilungen des Gewächsreiches, von

den Myxomyceten beginnend, ein.

Der Verleger hat das Buch in vorzüglicher Weise ausgestattet, die Text-

figuren und die bunten Tafeln sind zum allergrössten Theil von vorzüglicher

Ausführung, man vergleiche z. B. die Tafeln mit Speisepilzen, Zierblumen etc.

So mag denn das Buch, wie schon im Namen liegt, ein Hausschatz der

Familie werden und dazu beitragen, der Botanik neue Verehrer und Jünger

zuzuführen.

Seemen, 0. v. Mittheilungen über die Flora der ostfriesischen Insel

Borkum. (Allgem. Botan. Zeitschr. 1896. p. 81.) Schluss.

Es werden mehrere Farne genannt, sowie die Beschreibung des neuen

Fusarium Seemenianum P. Henn. gegeben,

Schiffner, V. Ueber die von Sintenis in Türkisch-Armenien ge-

sammelten Kryptogamen. (Oesterr. Bot. Ztschr. 1896. p. 274.)

Aufgezählt sind Pilze, Flechten, Leber- und Laubmoose. Als neu sind

folgende Varietäten beschrieben: Philonotis calcarea var. orthophylla, Pseudo-

leskea atrovirens var. revoluta, Amblystegium fallax var. crassicostatum,

ie n = = Pr. Br, be s 1. we ” - | ei. B- Be

(99)

Solla, F. Osservazioni botaniche durante una escursione in provincia

di Cosenza. (Malpighia 1896. p. 205.)

In der Aufzählung sind am Schlusse Pteridophyten, Laubmoose und Flechten

angeführt.

Warming, E. Lehrbuch der ökologischen Pflanzengeographie. Eine

Einführung in die Kenntniss der Pflanzenvereine. Deutsche Aus-

gabe von E. Knoblauch. Berlin (Gebr. Bornträger) 1896. 412 pag.

Pr. 7M.

Unter ökologischer Pflanzengeographie versteht der Verf. die Lehre, wie

Pflanzen und Pflanzenvereine ihre Gestalt und Haushaltung nach den auf sie

von aussen einwirkenden Factoren einrichten. Es wird hier also der floristische

Begriff der Formation vertieft und gleichs®m durch die äusseren Umstände,

welche die Formation bedingen, erläutert und erklärt. So schen wir denn, dass

überall in dem ganzen Buche Bezug genommen wird auf den Zusammenhang

zwischen Bau der Pflanzen und der auf sie einwirkenden Aussenwelt, zwischen

Uebereinstimmungen, welche die Glieder der einzelnen Formationen unter

einander zeigen u. s. w.

Bevor der Verf, an die specielle Schilderung der einzelnen Vegetations-

formen geht, behandelt er im Allgemeinen die ökologischen Factoren, d.h. alle

diejenigen Umstände, die von aussen auf die Pflanzendecke wirken, also Luft,

Licht, Boden, Thiere etc. Ein besonderer Abschnitt ist sodann dem Zusammen-

leben der Pflanzen in den Vereinen gewidmet, wo die Einwirkungen untersucht

werden, die die Pflanzen unter sich ausüben.

Sodann schildert Verf. die einzelnen Pflanzenformationen, wobei die eigent-

lichen tropischen Wälder als noch ganz unbekannt ausser Acht bleiben, Er

unterscheidet 4 grosse Vereinsklassen: Hydrophyten-, Xerophyten-, Halophyten-

und Mesophytenvereine. Jede einzelne zerfällt wieder in eine grosse Zahl von

Formationen, welche einzeln abgehandelt werden. Es würde zu weit führen,

die speciellen Eintheilungen hier wiederzugeben, erwähnt mag nur sein, dass

Verf. mehr als bisher auch die Kryptogamenklassen mit berücksichtigt. Nicht

blos die in den einzelnen Formationen häufiger auftretenden Kryptogamen

werden erwähnt, sondern auch die typischen nur aus Kryptogamen gebildeten

Vereine werden sehr ausführlich behandelt. Im letzten Abschnitt endlich wird

auf den Kampf zwischen den einzelnen Pflanzenvereinen eingegangen.

Das Buch ist nicht etwa eine trockene Aufzählung der die Formationen

bildenden Pflanzen, sondern führt uns in lebendiger Schilderung die Bildung

und die Zusammensetzung der Formationen vor Auge. Die Lectüre ist deshalb

ausserordentlich interessant, auch für Denjenigen, der nicht floristisch thätig ist.

Manche alltägliche Beobachtung wird an der Hand von Thatsachen anderer

botanischer Disciplinen leicht erklärt, mancher Ausblick öffnet sich in noch |

unbekannte Gebiete, kurz eine Fülle von Anregungen findet Der, welcher sich 2

in die Lectüre des Buches vertieft. Jedenfalls zeigt die Darstellung des Stoffes,

dass das an und für sich trockene Gebiet der Pflanzengeographie durch Ver-

quickung mit anderen Zweigen der Botanik interessant und anregend gestaltet

werden kann. R

II. Myxomyceten. et :

Dangeard, P. A. Contribution A l’Etude des Acrasides. (Le Botaniste

8 ser. tasc. 1. 1896. p, 1.) c. fig.

Verf. fand auf altem Pferdemist einen neuen Myxomyceten, Sappinia

pedata, der zur Familie der Acrasieen gehört. Der Pilz stellt einen tief stehenden

(100)

Typus dar. Die einzelnen Amöben können sich encystiren und Sporen bilden.

Daneben können die einzelnen Amöben Stiele bilden und sich festsetzen.

Endlich kommen noch gestielte, dickwandige Dauercysten vor.

Harvey, F. L. Contribution to the Myxogasters of Maine. (Bull.

Torrey Bot. Cl. 1896. p. 307.)

Aufzählung von 86 Myxomyceten.

Lippert, Ch. Beitrag zur Biologie der Myxomyceten. (Verhandl. d.

zool. bot. Ges. Wien 1896. p. 235.) c. tab. et fig.

Verf. studirt die Bildung der Sporangien bei Physarum cinereum var,

ovoideum, Didymium microcarpum, Chondrioderma difforme und Cribraria spec.

II. Schizophyten.

Behrens, J. Die Beziehungen der Mikroorganismen zum Tabakbau

und zur Tabakfabrikation. Zusammenf. Ref. (Centralbl. f. Bact.

u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 514, 540.)

Bütschli, 0. Weitere Ausführungen über den Bau der Cyanophyceen

und Bacterien. Leipzig 1896. W. Engelmann.

Der Verfasser vertheidigt in dieser Schrift seine an todten Schäumen ge-

wonnenen und auf das lebende Protoplasma übertragenen Ansichten über die

Structur desselben. Er ruft als Zeugen der Richtigkeit seiner Ansichten die

Photographie zu Hilfe, ob mit Glück möge der sachverständige Leser selbst

beurtheilen. Ueberhaupt müssen wir diesen auf die Abhandlung selbst ver-

weisen, da dieselbe nicht in Kürze referirbar ist. Nur das sei hier bemerkt,

dass ausser der Wabenstructur des Protoplasmas mancherlei Wunderbares hier

aufgetischt wird, G. Hieron.

Cambier, A. Resistance des germes bacteriens a la chaleur seche.

(Ann. de microgr. 1896. p. 49.)

Catiano, L. Ueber zwei fadenbildende Bacterien. (Cohn’s Beiträge

z. Biol. der Pfl. VII. 1896. p. 537.) c. tab. 2.

Bacillus rubiginosus und coccineus n. Sp.

Collins, F. S. New Cyanophyceae. (Erythea 1896. p. 19.)

Anabaena catenula var. americana n. v., A. Bornetiana, Cylindrospermum

minutissimum, alle aus Nordamerika.

Conn, H. W. The relation of pure cultures to the acid, flavor and

aroma of butter. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 409.)

Elion, H. Aufbewahrung von Nährmedien und Culturen. (Centralbl.

f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 572.)

Fermi, C. Stickstofffreie Mikroorganismen und Enzyme? (Centralbl.

f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 505.)

Freudenreich, E.v. Bemerkungen zu Dr. H. Weigmann's Mittheilung

über den jetzigen Stand der bacteriologischen Forschung auf dem

Gebiete des Käsereifungsprocesses. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2.

Abth. II, 1896. p. 316.)

(101)

Hariot, P. Le genre Pilonema (Journal de Botan. 1896. p. 203.)

Jegunow, M. Bacteriengesellschaften II. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2.

Abth. II. 1896. p. 441, 478.) c. tab. 2.

Klecki, V. v. Ein neuer Buttersäureerreger (Bacillus saccharo-butyricus)

und dessen Beziehungen zur Reifung und Lochung des Quargelkäses.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 169, 249, 286.) c. fig.

Kornauth, K. Ueber das Verhalten pathogener Bacterien in lebenden

Pflanzengeweben. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 1. Abth. XIX. 1896.

p. 801.)

Verf. hat in Keimpflanzen, sowie im Gewebe von Zwiebeln etc. Culturen

von pathogenen Bacterien unter den grössten Vorsichtsmaassregeln eingeführt

und gefunden, dass die Bacterien ausnahmslos abstarben. Sogar der resistente

Milzbrandbacillus ging zu Grunde. Daraus ergiebt sich, dass die in Pflanzen

lebenden Bacterien bestimmte, uns noch unbekannte Anpassungserscheinungen

zeigen müssen.

Marmier, L. Revue des travaux publies sur la microbie et les fer-

mentations, pendant les anndes 1893 et 1894. (Revue gener. de

Botan. 1896. p. 266. Anfang.)

Perraud, J. Action du sulfure de carbone sur quelques champignans

et ferments et en particulier sur la fermentation nitrique. (Ann.

de la science agronom. frang. et etrang. 2 ser. T. 1. 1896. p. 291.)

Rathay, E.E Ueber das Auftreten von Gummi in der Rebe und über

die »Gommose bacillaire«. (Jahresb. u. Progr. der k. k. ökolog.

u. pomol. Lehranstalt in Klosterneuburg. 1896. p. 1.)

Ravaz, L. Une maladie bacterienne de la vigne. (Revue de viti-

culture 1896.)

Renault, B. Sur quelques Racteries devoniennes. (Compt. rend.

CXXI. 1896. n. 21. p. 1226.)

— Les bacteries devoniennes et le genre Aporoxylon d’Unger. (Bull.

du Mus. d’Hist. Natur. Paris 1896. p. 201.)

Verf. beschreibt den Micrococcus devonicus aus dem Holz von Aporoxylon.

— Notes sur quelques nouvelles Bacteries fossiles. (Bull. du Mus.

d’Hist. Nat. Paris 1896. p. 285.)

Neu beschrieben Bacillus ozodeus und Gramma.

Roze, E Sur une nouvelle Bacteriacdke de la Pomme de terre.

(Bull. de la Soc. Mycol. de France 1896. p. 122.)

Verf. bringt weitere Beobachtungen über Micrococcusarten auf Kartoffeln,

über die er bereits in einem früheren Artikel in der gleichen Zeitschrift be-

richtet hat.

— Sur la cause premiere de la maladie de la Gale de la Pomme de

terre (Posato Scab des Americains). (Compt. rend. CXXII. 1896.

n. 18. p. 1012.)

A .

(102)

Roze, EE La cause premiere de la maladie de la Gale de la Pomme

de terre (Potato Scab) des Americains. (Bull. de la Soc. Mycol. de

France 1896. p. 126.)

Verf. fand als Ursache bei seinen Versuchen den Micrococcus pellicidus n. sp.

Setchell, W. A. Notes on Cyanophyceae I. (Erythea 1896. p. 87.)

Bemerkungen über Arten von Calothrix, Dichothrix, Rivularia, Stigonema,

Scytonema, Nostoc, Schizothrix, Hydrocoleum und Lyngbya.

Smith, E. F. The bacterial diseases of plants, a critical review of

the present stage of our knowledge. (The American Naturalist

1896. p. 626.)

Sternberg, G. M. A textbook of bacteriology. New York (W. Wood

& Co.) 1896. Pr. 24 sh.

Stutzer, A., und Maul, R. Ueber Nitrat zerstörende Bacterien.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 473.)

Waite, M. B. The cause and prevention of Pear Blight. (Yearbook

of the Unit. Stat. Dep. of Agricult. 1895. Washington 1896. p. 295.)

Verf. giebt die Beschreibung der Krankheit, die sich auf Bacillus amylovorus

zurückführt, und die Bekämpfungsmaassregeln in gemeinverständlicher Weise.

Winogradsky, $S. Zur Mikrobiologie des Nitrificationsprocesses.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 415, 449.)

Wittlin, J. Ueber die angebliche Umänderung von Tyrothrix tenuis

in ein Milchsäurebacterium. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth.

II. 1896. p. 475.)

IV. Algen.

Amann, J. Nouvelles methodes de pr¶tion des cryptogames cellu-

laires vertes. (Journal de Botan. 1896. p. 187.)

Batters, E.A. L. New or critical British Marine Algae. (Journ. of

Bot. 1896. p. 384.)

Bemerkungen zu einer Anzahl von Algenarten. Neu sind Streblonema

Buffhamianum, Acrochaetium endophysicum, Rhodochorton parasiticum.

Chodat, R. Note sur la florule pelagique d’un lac de montagne.

(Bull. de l!’Herb. Boiss. 1896. p. 543.)

Untersuchung des kleinen Lac Tannay in Bezug auf seine Algenflora.

- De Wildeman, E. Flore des Algues de Belgique. Bruxelles (A. Ca-

staigne) 1896. Pr. 12,50 F.

— Materiaux pour la flore algologique du departement de la Meuse

(France). (Notar. 1895. p. 62, 65.) c. tab.

Nur Aufzählung schon bekannter Formen,

(103)

Holmes, E. M. New marine Algae. (Journ. of Botan. 1896. p. 349.)

Ectoclinium kowiense, Ptilophora Beckeri, Grateloupia Wattii werden als

neu beschrieben; sie stammen aus Natal.

— New marine Algae from Japan. (Journ. of the Linn. Soc. XXXI.

p. 248.) c. tab. 6.

Wie bekannt, wurden während der letzten Jahre viele Beiträge zur japa-

nischen Algenflora von Schmitz, Hariot, Reinbold, De Toni, Okamura, Kjellman

und Petersen geliefert, die Ref. in seiner Arbeit „Phyceae japonicae novae.

Venezia 1895“ zusammengefasst hat. Ein neuer wichtiger Beitrag wird nun

von Holmes veröffentlicht, welcher einige interessante Materialien zur Prüfung

aus den japanischen Küsten erhalten hat. Es werden 23 neue Arten aufgestellt,

unter denen 4 Chlorophyceen, 3 Phaeophyceen und 16 Florideen abgebildet und

charakterisirt werden.

Neu sind: Cladophora Ohkuboana, Codium cylindricum, C. divaricatum,

Letterstedtia japonica, Glossophora coriacea, Haliseris undulata, Padina

arborescens, Amansia multifida Lamour. var. japonica, Chondrus elatus, C. ocel-

latus, Gracilaria Chorda, G. flexuosa, Grateloupia elliptica, G. flabellata, C. acu-

minata, G. furcata, G. imbricata, G. Ohkuboana, Gymnogongrus divaricatus, G.

furcellatus Ag. var. japonicus, Hypnea Saidana, Polyzonia fissidentoides, Grate-

loupia gelatinosa Grun., G. acutiuscula Grun., Nemalion pulvinatum Grun.

J. B. de Toni (Padua).

Lemmermann, E. Die Planktonalgen des Müggelsees bei Berlin.

(Ztschr, f. Fischerei u. deren Hilfswissensch. Mittheil. des Deutsch,

Fischerei-Vereins 1896. Hft. 2—4.)

Verf. untersuchte eine Anzahl von Proben von Planktonalgen des Müggel-

sees aus verschiedenen Jahreszeiten. Er fand 28 Algen (excl. Bacillariaceen)

darin vertreten und zwar waren die einzelnen Arten in den verschiedenen Mo-

naten ungleich häufig. Eine Gegenüberstellung mit der Planktonflora des grossen

Plöner Sees ergiebt, dass in diesem eine reichere Algenflora vorhanden zu sein

scheint.

Penhallow, D. P. Note on calcareons algae from Michigan. (Botan.

Gaz. 1896. p. 215.)

Renault, B. Sur quelques nouvelles especes de Pilas. (Bull. du

Mus. d’Hist. Natur. Paris 1896. p. 65.)

Pila minor, eine fossile Alge mit Gallerthülle.

— Note sur l’extension du genre Pila, a differents niveaux geologiques

(l. c. p. 104).

Schmidle, W. Süsswasseralgen aus Australien. (Flora vol. 82. 1896.

p. 297.) c. tab. et fig.

Das Material stammte von Queensland und wurde von Bailey gesammelt.

Neu sind: Oedogonium undulatum A. Br. var. Moebiusii, Stigeoclonium Askenasyi,

Spirogyra Baileyi, Cosmarium (Pleurotaeniopsis) bigibbum, C. granatum Breb.

var. gibbosum, C. Blyttii Wille f. australica, C. neapolitanum Bals. var. australi-

cum, Euastrum ansatum Ralfs var. biscrobiculatum und attenuatum, Staurastrum

dilatatum Ehrbg. f. australica, St. subpinnatum, St. sexangulare Lund. f. australica,

Gloeothece Baileyana.

(104)

Sauvageau, C. Observations generales sur la distribution des Algues

dans le golfe de Gascogne. (Compt. rend. CXXI. 1896. n. 26.

p. 1221.)

Setchell, W. A. Tendril-structures among the Algae (Erythea 1896.

p. 98.)

West, W. and West, G. $S. Algae from Central Africa. (Journ. of

Bot. 1896. p. 377.) c. tab.

Die Algen wurden von Gregory auf seiner Expedition zum Kenia gesammelt.

Neu sind: Euastrum hexagonum, Cosmarium mwangadanense, C. trochiscum, C,

lobulatum, C. subvenustum, Staurastrum nephroideum, S. subdilatatum, Coelastrum

Morus, Coelosphaerium confertum,

Zanfrognini, C. Contribuzione alla flora algologica del Modenese.

(Atti della Soc. dei Naturalisti di Modena 3 ser. XIV. 1896 p. 104.)

Brun, J. Diatomdes miocenes. (Le Diatomiste II. 1896. p. 229.)

Castracane, F. I processi di reproduzione e quello di moltiplicazione

in tre tipi di Diatomee. (Mem. della Pontif. Acc. dei Nuovi

Lincei XI. 1896.) c. tab. 2.

Cleve, P.T. Synopsis ofthe Naviculoid Diatoms Pt. II. (K. Svenska

Vet. Ak. Handl. XXVII. n. 3. Stockholm 1895.) c. tab. 4.

Elmore, C. J. Fossil Diatomaceae from Nebraska, and their relation

to modern species. (Bull. of the Torrey Bot. Club. 1896. p. 269.)

Aufzählung der Arten mit Angaben über die nächst verwandte recente

Species.

— The classification of Diatoms, Bacillariaceae, (The American

Naturalist 1895 p. 520.)

Karsten, G. Untersuchungen über Diatomeen I. (Flora vol. 82.

1896. p. 286.) c. tab.

Beobachtungen der Auxosporenbildung bei Navicula peregrina, scopulorum

und Libellus constrictus.

Schawo, M. Beiträge zur Algenflora Bayerns (Bacillariaceae). (14. Ber.

des Bot. Ver. zu Landshut 189495. Landshut 1896. Abh. p. 1.)

c. tab. 10.

Verf. hat mit ausserordentlichem Fleiss die Diatomeenflora des südlicheren

Bayerns erforscht und die Arten sämmtlich gezeichnet. Jede einzelne Art wird

kurz charakterisirt; die Standorte sind möglichst genau gegeben. Es lässt sich

erwarten, dass die Zahl der Arten bei weiteren Studien des Verf. sich noch

bedeutend vermehren wird, da schon jetzt viel mehr Arten angegeben werden,

als 1893 Weiss in seinem Bericht aufzählte.

En Er : F TREUEN ; di hr TI

(105)

Chodat, R. Matcriaux pour servir A l’'histoire des Protococcoidees.

(Bull. de I’'herb. Boissier 1896. p. 273.) c. fig.

Beschrieben wird zuerst die Entwicklung von Coclastrum sphaericum; dies

ist nichts Anderes als eine Protococcacee, die aus 16—8 Zellen besteht, welche

um einen centralen Hohlraum angeordnet sind. Abgebildet werden ferner die

Theilungen von Sorastrum appendiculatum und Tetraedron minimum. Neu be-

schrieben werden: Chlamydomonas pertusa, C. stellata und Pteromonas angulosa.

Dumond, A. M. On Volvox globator. (Proc. of the Rochester Ac.

of Sc. II. 1895. p. 293.)

Eine Schilderung der Entwicklung auf Grund unserer heutigen Kenntnisse,

Fuchs, T. Ueber eine fossile Halimeda. (Sitzber. d. k. k. Ak. der

Wiss. Wien CII. 1895. p. 200.) c. tab.

Ishikawa, C. Note on the Japanese species of Volvox. (Zoological

Magazine VII. Tokyo n. 91. 1896. p. 25.) ce. tab.

Verf. untersuchte die beiden Arten Volvox minor und globator. Im Ganzen

ist seine Arbeit eine Bestätigung und Nachprüfung der Angaben Klein’s, die er

nur in unwesentlichen Punkten in Bezug auf Maassangaben erweitert.

Rothert, W. Vaucheria Walzi n. sp. (La Nuova Notar. 1896. p. 81.)

c. fig.

Neue Art aus der Gruppe der Corniculatae b) Racemosae; in einem Graben

bei Kasan.

West, W. and West, G. $S. Notes on recently published Desmidieae.

(Journ. of Botan. 1896. p. 336.)

Allen, T.F. The Characeae of America. Pt. IL, 19—28. 10. taf. 1896.

Neu sind Nitella Leibergi und N. transilis.

King, Th. On Sargassum bacciferum Ag. (Trans. of the Nat. list.

Soc. of Glasgow IV. pt. II. 1894,95. Glasgow 1896. p. 300.)

Sauvageau, C. Sur la membrane de l’Ectocarpus fulvescens. (Compt.

rend. CXXI. 1896. p. 896.)

— Note sur l’Ectocarpus (Pilayella) fulvescens Thur. (Journal de

Botan. 1896. p. 165, 181.) c. fig.

Verf. beschreibt die Organisation und die Entwicklung der Alge mit be-

sonderer Berücksichtigung ihrer systematischen Stellung und Benennung.

Brand, F. Fortpflanzung und Regeneration von Lemanea fluviatilis.

(Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 185.)

Lemanea fluviatilis besitzt eine ergiebige und sogar der Austrocknung

längere Zeit widerstehende Regenerationskraft in beliebigen vegetativen Wand-

zellen ihrer ausgewachsenen Borsten. — Kein anderer vegetativer Theil der

EN I

(106)

Pflanze verträgt absoluten Wassermangel. — Die Carposporen können, in den

Borsten eingeschlossen, eine längere Trockenzeit ertragen. — Die Sporen unter-

scheiden sich von den an Grösse und Form oft sehr ähnlichen austreibenden

Regenerativzellen deutlich durch die Beschaffenheit des Inhalts und durch den

relativ geringeren Querdurchmesser der Keimfadenbasis. — Die Auskeimung der

Sporen in Zellfäden ist von mehreren Beobachtern festgestellt. — Es ist fraglich,

ob sich auch parenchymähnliche Gebilde direct aus den Sporen bilden können.

Chester, G. D. Notes concerning the development of Nemalion

multifidum. (Botan. Gaz. 1896. p. 340.) c. tab. 2,

Darbishire, 0. V. Spencerella australis, eine neue Florideengattung

und -Art. (Ber. d, Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 195.) c. tab,

Die Art stammt von der westaustralischen Küste.

Foslie, M. Remark on Haematostagon balanicola Strömf. (La Nuova

Notar. 1896, p. 84.)

Holmes, E. M. New Marine Algae (La Nuova Notar. 1896. p. 86.)

Verf. wendet sich gegen die Ausführungen von Schmitz, die dieser gegen

eine Arbeit von ihm gemacht hatte.

Joffe, Rachel. Observations sur la fecondation des Bangiacdes. (Bull.

de la Soc. Bot. de France 1896. p. 143.) c. tab.

Osterhout, W. J. V. On the life-history of Rhabdonia tenera J. Ag.

(Ann. of Bot. 1896. p. 403.) c. tab. 2.

Verf. untersucht den anatomischen Bau des Thallus und der Geschlechts-

organe, die Entwicklung der letzteren, die Befruchtung, die Keimung und Ent-

wicklung der jungen Pflanzen, sowie die Tetrasporen und ihre Keimproducte.

Am Schluss ist eine kurze Zusammenfassung der Resultate gegeben.

Pfeiffer, R. v. Wellheim, F._ Weitere Mittheilungen über Thorea

ramosissima Bory. (Oesterr. Bot. Ztschr. 1896. p. 315.). c. tab.

Verf. untersuchte die Gallertbildung an den Fäden der Thorea. Er ver-

wandte hierzu ausschliesslich fixirtes Material, das in besonderen Fixirungs-

mitteln, die angegeben werden, conservirt wurde,

Phillips, R. W. On the development of the Cystocarp in Rhodo-

melaceae II. (Annals of Bot. 1896. p. 185.) c. tab. 2,

Verf. untersucht Dasya coccinea, Chondria tenuissima, Laurencia pinna-

tifida und Polysiphonia thuyoides.

Robertson, D. Bonnemaisonia asparagoides C. Ag., that gave a blue

stain to paper. (Trans. of the Nat. Hist Soc. of Glasgow n. s.

vol. IV. Pt. II. 1896, p. 172.)

— Halicystis ovalis Aresch., an Alge from Lamlash. (l. c. p. 174.)

Smith, Arma Anna. The development of the Cystocarp of Griffithsia

Bornetiana. (Botan. Gaz. XXIl. 1896. p. 35.) c. tab. 2.

Weber van Bosse, Anna. Notes on Sarcomenia miniata Ag. (Journ.

of Botan. 1896. p. 281.) c. tab.

Notizen über den Bau und die Entwicklung der Fructificationsorgane.

(107)

V. Pilze.

Benecke, W. Die Bedeutung des Kaliums und des Magnesiums für

Entwicklung und Wachsthum des Aspergillus niger, sowie einiger

anderer Pilzformen. (Botan. Zeit. 1896. p. 97.)

Verf. theilt die Resultate seiner mühevollen Untersuchungen über die Er-

nährung von Schimmelpilzen in künstlichen Nährlösungen mit. Es ergiebt sich

daraus unzweifelhaft, dass eine vollständige Nährlösung für Schimmelpilze und

ähnliche Organismen Kalium und Magnesium enthalten muss.

Blytt, A. Bidrag til kundskaben om Norges soparter IV. Perono-

sporaceae, Chytridiaceae, Protomycetaceae, Ustilagineae, Uredineae.

(Christiania Vidensk. Selsk. Forhandl. 1896. n. 6.)

Aufzählung der bisher aus Norwegen bekannten Arten, darunter mehrere neue.

Bourquelot, E. Influence de la reaction du milieu sur l’activite du

ferment oxydant des Champignons. (Compt. rend. CXXII. 1896.

n. 4. p. 260.)

Cheney, L. $. Parasitic Fungi of the Wisconsin Valley. (Trans. of

the Wisconsin Acad. of Sc., Arts and Lettr. X. 1894.95. Madison

1895. p. 69.)

16 Arten von parasitischen Pilzen genannt.

Cypers, V. v. Beiträge zur Kryptogamenflora des Riesengebirges und

seiner Vorlagen. iVerhandl. zool. bot. Ges. Wien. 1896. p. 310.)

Nur Pilze aufgezählt.

Dangeard, P.A. Une maladie du peuplier dans l’ouest de la France.

(Le Botaniste 5 ser. fasc. 1. 1896. p. 38.)

Bei der Untersuchung kranker Pappeln fand Dangeard in den jungen

Wurzeln eine Chytridiacee, Rhizophagus populneus n. sp., und an den Aesten

in grosser Menge Calicium populneum. Beiden Organismen zusammen schreibt

Verf. das Absterben der Bäume zu.

De Wildeman, E. Ouelques notes sur la nomenclature generique des

Champignons. (Bull. de la Soc. belge de microsc. XX. 1896. p. 108.)

— Notes mycologiques VIL. VIII. (Ann. de la Soc. belge de microsc.

XX. 1896. p. 19, 105.) c. tab.

Dutertre, E. Les stations naturelles des champignons et leur spores,

ouvrage accompagne de 2400 dessins extraits d’un manuserit

inedit de M. Ch. Richon. (Mem. de la Soc. des sciences et arts

de Vitry-le-Frangois 1896.)

| Ellis, J. B. and Bartholomew, E. New Species of Kansas Fungi I.

(Erythea 1896. p. 79.) N. A.

Eilis, J. B. and Holway, E. W. D. New Jowa Fungi. (Bull, of Lab,

Nat. Hist. Univ. Jowa II. 1895. p. 41). N. A,

(108)

Escombe, F. Chimistry of lichenic and fungal membrans, (Annals

of Bot. X. 1896. p. 293.)

Galloway, B. T. Spraying for fruit diseases (Farmers Bull. n. 38.

1896.)

Halsted, B. D. Fungous diseases of ornamental plants. (Transact.

of the Massachusetts Hortic. Soc. Pt. I. 1895. Boston 1896.) c. fig.

Beschreibung der wichtigsten auf Zierpflanzen auftretenden Pilze mit Angabe

der Verhütungs- und Bekämpfungsmassregeln.

Hennings, P. Die Pilzkrankheiten afrikanischer Getreidearten. (Notizbl.

d. k. bot. Gart. u. Mus. zu Berlin No. 4. 1896. p. 117.)

Zusammenstellung der auf Sorghum, Reis und Mais bisher in Afrika be-

obachteten Pilzkrankheiten.

Jaczewski, A. de. III. serie de materiaux pour la flore mycologique

du gouvernement de Smolensk. (Bull. des la Soc. imp. des

Natural. de Moscou. 1896. n. 1.)

Aufzählungen der neuen Funde (n, 255—662). N. A.

‚ Issatschenko, B. Ueber die parasitischen Pilze des Gouvernements

Cherson. St. Petersburg 1896. Russ. :

Kirchner, O0. und Boltshauser, A. Atlas der Krankheiten und Be-

schädigungen unserer landwirthschaftlichen Culturpflanzen I. Krank-

heiten und Beschädigungen der Getreidearten. Stuttgart (E. Ulmer),

20 Taf. Pr. 10 M.

Klebahn. In Dänemark aufgetretene Krankheiten. (Zeitschr. f.

Pflanzenkr. 1896. p. 151.)

Krüger, W. Ueber Krankheiten und Feinde des Zuckerrohrs. (Ber.

d. Versuchsstation für Zuckerrohr in Westjava 1896.)

Lataste, F. Contagiosit@ et prophylaxie de la maladie tuberculeuse

de la Vigne. (Compt. rend. CXXIII. 1896. n. 3. p. 200.)

Ludwig, F. Die Genossenschaften der Baumflussorganismen. Zu-

sammenf, Ref. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 337.)

— Sur les organismes des &coulements des arbres- suite. (Rev.

mycol. 1896 p. 114.) c. tab.

Mac Bride, T. H. Saprophytic Fungi of eastern Jowa. (Bull. Lab,

Nat. Hist. Univ. Jowa III. 1895. p. 1.)

Marchal, E. les maladies cryptogamiques des plantes cultivees,

Bruxelles (A. Castaigne) 1896. Pr. 2 Fr.

Marchand, L. Enumeration methodiaue et raisonne des familles et

‚ q

des genres de la classe des mycophytes, Champignons et Lichens,

Paris 1896. Pr. 10 Fr.

(109)

Mattirolo, 0. Sopra alcune larve micofaghe. (Bull. della Soc. Bot.

Italiana. 1896. p. 180.)

Wie aus den Arbeiten von Löw, Trelease, Thomas, Rübsaamen hervorgeht,

fressen einige Gallmückenlarven die Sporen mehrerer Uredineen. Verf. hat

diese Thatsache für einige Diplosis-Larven, welche die Sporen von Aecidium

Asperifolii Pers. (auf Symphytum orientale L.), Aecidium Clematidis DC. und

Phragmidium subcorticium Schrank fressen, bestätigt.

Es wäre vielleicht noch zu untersuchen, ob die Larven die Vertheilung der

Sporen bewirken, wie die Fische die Verbreitung der Algensporen, und einige

carpophage Vögel jene der Samen erleichtern. J. B. de Toni (Padua).

Patouillard, N. Champignons nouveaux ou peu connus. (Bull. de

la Soc. Mycol. de France. 1896. p. 132.) c. tab. N. A.

Patouillard, N. et Hariot, P. Liste des Champignons recoltes en

Basse-Californie par M. Diguet. (Journ. de Botan. 1896. p. 250.)

c. tab. N. A.

Rostrup, E. Oversigt over Sygdommenes Öptraeden hos landbrugets

Avlsplanter i Aeret 1895. (Tidskr. Planteavl. III. 1896. p. 123.)

Saccardo, P. A. Mycetes sibirici III. (Malpighia 1896. p. 258.)

c. tab. 2.

Die Pilze sind von Martianoff und Kitmanoff in Sibirien gesammelt worden;

dadurch werden die für Sibirien bekannten Arten auf 1023 erhöht. Die hier

bestimmte Sammlung umfasst 215 Nummern, darunter neue Arten,

Sappin-Trouffy. Recherches mycologiques. (Le Botaniste 5 ser, fasc. 1.

1896. p. 44.) c. fig.

Untersuchung von Tubercularia persicina, Darluca filum und Auricularia

auricula Judae.

Smith, E. F. Hints on the study of Fungi I. (Asa Gray Bull. IV.

1896. p. 26.) II. (l. c. p. 37.)

Stewart, F. C. Potato diseases on Long Island in the season of

1895. (New York Agric. Exp. Stat. Geneva Bull. 101. 1896.)

Tassi, Fl. Micologia della Provincia Senese II. (Nuovo Giornale

Bot. Ital. 1896. p. 324.)

Aufzählung von 261 Arten aus allen Pilzklassen.

Tobisch, J. Beiträge zur Kenntniss der Pilzflora von Kärnten,

(Oesterr. botan. Zeitschr. 1896. p. 103, 140, 220, 281, 323.)

Aufgeführt werden im Ganzen 288 Arten von Pilzen aus allen Familien,

Viele darunter sind Seltenheiten.

Tracy, S. M. and Earle, F.$. New Species of Fungi from Mississippi.

(Bull. Torrey Bot. Cl. 1896. p. 205.) N. A.

Underwood, L. M. Mycology in the Southern States. (Gard. and

Forest IX. 1896. p. 263.) c. fig.

a in ann ı Si Fe Er u! . 1 ar tn, ee

(110)

Vestergren, T. Bidrag till kännedomen om Gotlands Svampflora.

(Bihang til k. Svenska Vet. Ak. Handl. XXI. Afd. Il. n. 6. 1896.)

c. tab.

Aufzählung der beobachteten Arten z. T. mit Bemerkungen. N. A.

Voglino, P. Gli studi micologici. Importenza ed utilitä. (L’Economia

rurale 1896. Fasc. 8.)

Wagner, G. Ueber die Verbreitung der Pilze durch Schnecken.

(Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 144.)

Mittheilung von sehr interessanten Fütterungsversuchen von Schnecken

mit Pilzsporen, um die Uebertragbarkeit gewisser parasitischer Pilze auf Pflanzen

zu constatiren. Ein positives Resultat erzielte Verf, bei Plasmopara nivea und

anderen Peronosporaceen. Ferner gelangen die Infectionen, wenn die betreffenden

Pflanzen mit dem Schneckenkoth bestrichen wurden, z.B, bei Oidium von Ery-

siphe communis, Puccinia Caryophyllearum etc, Mit Tubercularia von Nectria

cinnabarina gelangen die Versuche nur, wenn die Rinde des Baumes vorher

verletzt war.

Woodworth, C. W. Notes on various diseases and insects. (Report

of Work of the Agr. Exp. Stat. of the Univ. of California for the

year 1894,95. Sacramento 1896, p. 231.)

Notizen über einige Pilz- und Insectenkrankheiten.

Wehmer, C. Die Pilzkrankheiten der Kartoffelpflanze. Zusammenf.

Ref. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 261, 295.)

Wünsche, 0. Die verbreitetsten Pilze Deutschlands. Leipzig (B. G.

Teubner) 1896. Pr, 1,40 M.

Craig, T. A rare fungus parasitic on an ÖOscillaria. (Proc. of the

Nat. Sc. Assoc. Staten Island V. 1896. p. 17.)

Cunningham, D. D. A new and parasitic species of Choanephora.

(Ann, of the Royal Rot. Gard. Calcutta VI. Pt. I. 1895.) c. tab. 2.

Choanephora Simsoni Cunningh.

Dangeard, P. A. Note sur une nouvelle espöce de Chytridinee. (Le

Botaniste 5 ser. fasc. 1. 1896. p. 21.) c. fig.

Deckenbach, C. Note sur une nouvelle espöce de Mucorindes,

(Scripta botanica V. 1896. p. 245.) c. tab.

Leger, M. Recherches sur la structure des Mucorindes (These)

Poitiers (Druinaud) 1896.

Mangin, L. Recherches sur les Peronospordes. (Bull. de la Soc.

d’Hist. nat. d’Autun VIII. 1896. p. 108.) c. fig. et tab. 2.

Thaxter, R. New or peculiar aquatic fungi IV. (Botan. Gaz. 1896.

Verf. behandelt in dieser Arbeit die Genera Rhipidium, Sapromyces und

Araiospora n, gen. Er giebt vortreffliche Abbildungen der von ihm be-

(111)

obachteten Arten. Auf Grund seiner Studien gliedert er jetzt die Familie der

Leptomitaceen in folgende Gattungen: Gonapodya (?), Leptomitus, Apodachlya,

Rhipidium, Araiospora, Sapromyces. Von den 3 letzten Gattungen beschreibt

er neue Arten.

Wager, H. On the Structure and reproduction of Cystopus candidus

Lev. (Ann. of Bot. 1896. p. 295.) c. tab. 2.

Verf. verfolgt die Entwicklung des Pilzes mit besonderer Rücksicht auf

das Verhalten der Kerne. Er constatirt das Verhalten der Kerne bei der Be-

fruchtung, ferner dass die Theilungen in ganz ähnlicher Weise vor sich gehen

wie bei den Kernen der höheren Pflanzen.

Wakker, J. H. De Schimmels in de Worthels van het Suikerriet.

(Arch. voor de Java-Suikerindustrie 1896. Afl. 8.) c. tab,

Verf. beschreibt einen Wurzelschimmel des Zuckerrohrs, der höchst wahr-

scheinlich zur Gattung Pythium gehört.

Magnus, P. Eine nordamerikanische Ustilaginee auf Panicum crus

galli. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1896. p. 216.) c. tab

Burt, E.A. The development of Mutinus caninus (Huds.) Fr. (Ann.

of Bot. 1896. p. 343.) c. tab. 2.

Es ist leider ohne Figuren nicht möglich, auf die Einzelheiten der

interessanten Arbeit einzugehen. Erwähnt sei nur, dass auch Verf. die Clathreae

und Phalleae als 2 parallele, aber nicht nahe verwandte Reihen auffasst.

Carleton, M. A. A new Aecidium of peculiar Habit. (Trans. of

Kansas Acad. of Sc. XIV. 1896. p. 44.)

Deutsch, R. Tafel essbarer Pilze. Farbendruck Annaberg (Graser)

1896. Pr. 0,90 M.

Dietel, P.E Bemerkungen über einige Rostpilze VI. (Mittheil. des

Thür. Bot. Ver. Neue Folge NHft. VIII. 1895.)

Verf. theilt einige interessante Beobachtungen über die Aufeinanderfolge

der Fruchtformen bei Triphragmium Ulmariae in den Alpen mit.

Dietel, P. und Neger, F. Uredineae chilenses I. (Engl. Jahrb. XXI.

1896. p. 348.) N. A.

Eriksson, J. Einige Beobachtungen über den stammbewohnenden

Kiefernblasenrost, seine Natur und Erscheinungsweise. (Centralbl.

f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 377.)

Die Untersuchungen des Verf. führen ihn zu folgenden Schlüssen:

1. Die auf Pinus Strobus und silvestris in Schweden auftretenden Blasen-

rostformen sind unter einander nicht so scharf getrennt wie die in Deutschland

vorkommenden Peridermium Strobi, Cornui und Pini. Alle 3 sind daher nur

als specialisirte Formen einer Art aufzufassen.

2. Der Weymouthskiefernrost ist nicht als Folge einer Ansteckung von

Seiten des Cronartium auf Ribes nigrum aufzufassen, sondern ist erst in jüngster

Zeit in Schweden durch Samen oder Pflanzen eingeführt.

ei af af

(112)

3. Die Cronartiumarten auf Ribes und Cynanchum können sich unabhängig

von den zugehörigen Peridermien erhalten,

4. Eine directe Verbreitung des Peridermiums von Kiefer zu Kiefer ist

wohl anzunehmen, die Incubationszeit beträgt etwa 4—5 Jahre.

5. Die Krankheit kann vielleicht auch durch kranke Samen entstehen, aber

erst nach mehreren Jahren Incubationszeit.

Eriksson, J, Welche Rostarten zerstören die australischen Weizen-

ernten? (Ztschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 141.)

Verf, fand an australischen Weizensorten nur Schwarz- und Braunrost.

Eriksson, J. und Henning, E. Die Getreideroste, ihre Geschichte und

Natur, sowie Maassregeln gegen dieselben. Stockholm (Norstedt &

Söner). Mit 13 Taf. u. 1 Karte. Preis 28 M,

Ferry, R. Les Protobasidiomycetes du Bresil d’apres M. le Dr. A.

Möller. (Rev. mycol. 1896. p. 101.) c. tab. 2.

Jacobasch, E. Einige theils neue, theils seltene Pilze. (Allgem,

Botan. Zeitschr. 1896. p. 145.) N. A.

Istvanffi, G. v. Untersuchungen über die physiologische Anatomie

der Pilze mit besonderer Berücksichtigung des Leitungssystems

bei den Hydnei, Thelephorei und Tomentellei. (Pringsh. Jahrb,

1896. p. 391.) c. tab. 5.

Verf. versucht eine physiologische Eintheilung der Pilzgewebe. Er unter-

scheidet 1. System der Meristeme, der Gewebsbildung, 2. S. des Schutzes,

3. 5. der Ernährung, 4. S. der Vermehrung. In Bezug auf die einzelnen

Unterabtheilungen, die möglichst dem Schwendener -Haberlandt'schen System

nachgebildet sind, kann hier nur auf die interessante Arbeit selbst verwiesen

werden.

Juel, H. 0. Mykologische Beiträge V. (Öfvers. af Kongl. Vetensk.

Akad. Förhandl. 1896. n. 3. p. 213.) c. fig.

Verf, theilt einige Culturversuche mit, die er mit mehreren Pucciniaarten

unternommen hat, um ihren Pleomorphismus festzustellen. Neu wird aufgestellt

Puccinia variabilis f. Intybi. Mitgetheilt werden ferner einige bemerkenswerthe

Uredineenfunde aus Schweden.

Lübstorf, W. Zur Pilzflora Mecklenburgs II. Die Basidiomyceten.

(Arch. für Freunde der Naturgesch. in Mecklenburg 1896.)

Mac Bride, T. H. An interesting Nicaraguan Puff-ball. (Bull. Lab.

Nat. Hist. Univ. Jowa III. 1896. p. 216.)

Bovista lateritia.

Massee, G. A revision of the genus Coprinus. (Annals of Bot. 1896.

Verf, giebt in der Einleitung die geographische Verbreitung und die Ver-

wandtschaftsverhältnisse der Gattung. Er theilt die Arten in 6 Sectionen ein,

hauptsächlich nach dem Vorhandensein oder Fehlen der Volva, des Ringes,

ferner nach der Obertlächenstructur des Hutes. Im Ganzen sind es 165 Arten,

darunter auch neue Arten,

(113)

Mattirolo, 0. Sulla Tilletia controversa_Kühn raccolta in Albania

dal Dott. A. Baldacci. (Bull. della Soc. Bot. Ital. 1896. p. 107.)

Neger, F. Las Uredineas en Chile. (Anales de la Universidad San-

tiago, Chile 1895.) N. A.

— Acomodacion de la Planta-Huesped a las condiciones de vida de

un paräsito. (Anales de la Universidad Santiago de Chile. tom. 91.

1896. p. 49.) c. tab.

Verf. giebt die Diagnose von Aecidium Dichondrae, gehörig zu Puccinia

Dichondrae, mit der Schilderung der eigenthümlichen Veränderungen, welche

Blattstiele und Blätter von Dichondra repens erleiden.

Niel. Observations sur le Polyporus giganteus Pers. et le P. acanthoides

Bull. (Bull. de la Soc. Mycol. de France 1896. p. 120.)

Preuss. Eine abweichende Form von Agaricus ulmarius. (Zeitschr.

der Botan. Abtheil. des Naturw. Vereins der Prov. Posen 1896,

p. 88.)

Richards, H. M. On some points in the development of Aecidia.

(Proc. of the Americ. Ac. of Arts and Sc. XXXI. 1896. p. 255.) c. fig.

Verf. untersuchte mehrere Aecidien auf ihre Entwicklung. Das wichtigste

Resultat ist das Auffinden einer fertilen Hyphe, aus der die sporentragenden

Sterigmen der Aecidien hervorsprossen. Die Figuren zeigen diese Hyphen deut-

lich. Trotzdem dürfte eine Bestätigung von anderer Seite noch abzuwarten

sein, da kein früherer Beobachter Aehnliches gesehen hat.

Rostrup, E. Biologiske Arter og Racer. (Botan. Tidsskr. XX, 1896,

p. 116.)

Sappin-Trouffy. Sur la signification de la f&condation chez les Ure-

dinces. (Le Botaniste 5 ser. Fasc. 1. 1896. p. 32.) c. fig.

Abdruck seiner in den Compt. rend. über denselben Gegenstand veröffent-

lichten Arbeit.

Stewart, F. C. Combating Carnation Rust. (New York Agric. Exp.

Stat. Geneva Bull. 100. 1896.)

Ulsamer, J. A. Unsere essbaren Pilze. Kempten (J. Kösel) 1896.

Pr. 1,40 M.

Voglino, P. Sullo sviluppo della »Stropharia merdaria« Fr. (Atti

della R. Acc. della sc. di Torino XXXI. 189596.) c. tab.

Wagner, G. Beiträge zur Kenntniss der Puccinia silvatica Schroet.

und der P. sessilis Schneid. (Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1896.

p. 212.)

— Zum Generationswechsel von Melampsora tremulae Tul. (Oesterr,

Bot. Zeitschr. 1896. p. 273.)

Verf. stellt Culturversuche an mit Melampsora tremulae. Er erhielt das

Resultat, dass von gewissen Standorten dieses Pilzes das Caeoma Chelidonii

Jledwigia bad, AAAV, 1890. 10

(114)

auf Chelidonium resultirte. Danach spaltet er die Melampsora tremulae vor-

läufig in die 3 folgenden Arten: 1. M, tremulae Tul. mit Caeoma pinitorgum

auf Pinus silvestris und C. Larieis auf Larix europaea. 2. M. Rostrupii Wagn.

mit Caeoma Mercurialis auf Mercurialis perennis. 3. M. Magnusiana Wagn. mit

dem Caeoma Chelidonii auf Chelidonium majus.

Wakker, J. H. De ziekte der kweekbeddingen en het plotseling dood

gaan van Net riet in snijtuinen veroorzaakt dor Marasmius Sacchari

n. sp. (Arch. voon de Java-Suikerindustrie 1895 Afl. 13.) c. fig.

Vergl. dazu Centralbl. f,. Bact. u. Par. |

Berlese, A. N. Icones Fungorum ad usum Sylloges Saccardianae

adcommodatae (Sphaeriaceae-Dictyosporae) p. 29—68, tab. KLV—C.

1896. Berlin (Friedländer & Sohn).

Chatin, A. Un Terfäs d’Espagne et trois nouveaux Terfäs du Maroc.

(Compt. rend. CXXII. 1896. n. 4. p. 211.)

— Truffes (Terfas) de Mesrata, en Tripolitaine. (Bull, de la Soc.

Bot. de France 1896. p. 139.)

Nachweis, dass Terfezia Metaxasi von Bagdad auch in Tripolis vorkommt.

Dangeard, P. A. La reproduction sexuelle dans le Sphaerotheca

Castagnei, (Le Botaniste 5 ser. fasc. 1. 1896. p. 27.)

Dangeard weist die Annahme einer Sexualität bei Sphaerotheca, wie sie

auch aus Harper's Untersuchungen hervorzugehen scheint, zurück.

Earle, F. $. On some species of the genus Meliola. (Bot. Gaz. 1896.

p. 224.)

Verf, giebt von der zweifelhaften Meliola tenuis Berk. et Curt. eine gute

Diagnose auf Grund von ihm gesammelten Materials, Zu einer Anzahl anderer

Meliola- Arten werden Bemerkungen gegeben.

Hennings, P. Ueber sogenannte Thierpflanzen. (Naturwiss. Wochenschr.

1896. p. 317.) ec. fig.

Die interessantesten Arten von Cordyceps werden beschrieben und ab-

gebildet.

Jaczewski, A. de. Ftude monographique de la famille des Sphaeria-

cees de la Suisse (Bull. de la Soc. Mycol. de France 1896. p. 86.)

c. tab.

Verf, setzt in dieser Abhandlung seine monographische Bearbeitung der

schweizerischen Pyrenomyceten fort. Die Familie umfasst nach Jaczewski

1. Tribus Sphaerelldes: Müllerella (mit 1 Art), Pharcidia (6), Tichothe-

cium (5), Ascospora (5), Carlia (9), Sphaerella (57), Sphaerulina (5).

Von den beiden anderen Tribus kommt der eine in der Schweiz nicht

vor, der andere ist noch nicht behandelt, Mehrere Arten werden zu anderen

Gattungen gestellt, eine Sphaerella neu beschrieben.

Mattirolo, 0. Che cosa sia il Choiromyces meandriformis di Gennari

e de Notaris publicato nell’ erbario crittog. ital. n. 185. (Bull. della

Soc, Bot. Ital, 1896. 102.)

(115)

Mattirolo, 0. La Delastria rosea Tul. in Italia. (Bull. della Soc. Bot.

Ital. 1896. p. 177.)

Patterson, F. W. A study of North American parasitic Exoasceae.

(Bull. Lab. Nat. Hist. Univ. Jowa III. 1895. p. 89.) c. tab. 4.

Smith, Annie L. Nomenclature of british Pyrenomycetes. (Journ. of

Botan. 1896. p. 358.)

Einige Neutaufungen bei Sordariaceen.

Starbäck, K. Sphaerulina halophila, en parasitisk pyrenomycet. (Bi-

hang til K. Svensk. Vet. Ak. Handl. XXI. Afd. III. n. 9. 1896.)

c. tab.

Verf, untersuchte die Entwicklungsgeschichte des interessanten Pilzes. Er

weist nach, dass das Mycel parasitisch in den Blättern von Halianthus peploides

wächst. Unter der Epidermis liegende Hyphencomplexe entwickeln sich zu

Perithecien, welche auf den Blattresten überwintern und dann erst reifen.

Walters, L.L. Erysipheae of Riley County, Kansas. (Trans. of Kan-

sas Acad. of Sc. XIV. 1896. p. 200.) c. fig.

Wehmer, C. Die Eichenblättrigkeit der Hainbuche in ihrer Beziehung

zur Hexenbesenbildung. (Botan. Zeit. 1896. p. 81.) c. tab.

Wenn Carpinus Betulus von der Exoascuskrankheit befallen wird, so

können sich unter Umständen an den erkrankten Trieben eichenblattartige

Blätter entwickeln. Von welchen Bedingungen diese Erscheinung abhängig ist,

wurde nicht aufgeklärt.

Woronin, M. und Nawaschin, $. Sclerotinia heteroica. (Zeitschr. f.

Pflanzenkr. 1896. p. 129.) c. tab. 2.

Nachdem in einer früheren Abhandlung die beiden Verf. bereits die Ent-

wicklungsgeschichte der Sclerotinia heteroica skizzirt hatten (Ber. d. Deutsch.

Bot. Ges. 1894), wird jetzt ausführlich der Wirthswechsel und die Entwicklung

der Nebenfruchtformen beschrieben. Der Entwicklungsgang spielt sich wie der

der anderen Sclerotinien ab, nur dass die Conidien auf den Blättern von Vacci-

nium uliginosum sich finden.

Arnold, F. Labrador. München (Höfling) 1896.

Aufzählung von Flechten aus Labrador vergl. Lichenol. Fragmente XXXV.

Calkins, W. W. The Lichen-flora of Chicago and Vicinity. (Bull.

Geol. et Nat. Hist. Surv. Chicago Acad. of Sc. I. 1896. p. 1.)

125 Arten aufgeführt. Neu sind Lecanora proximella Nyl. und Verrucaria

prosperella Nyl.

Fink, Be Lichens of Jowa. (Bull. of Lab. Nat. Hist. of Univ. Jowa

IH, 1895; p. 70.)

Glück, H. Ein deutsches Coenogonium. (Flora vol. 82. 1896. p. 268.

c. tab. et fig.

Das neue Coenogonium germanicum Glück ist äusserlich dem Cystocoleus

rupestris ähnlich; die Verschiedenheit ergiebt sich aber sofort bei der Unter-

10*

a in,

(116)

suchung der Alge, die bei Coenogonium eine Trentepohlia (T. germanica n. sp.),

bei Cystocoleus eine Conferva ist. Verf. macht nähere Angaben über die Ent-

wicklung und den Bau von Coenogonium und der nächst verwandten Gattungen,

worauf hier nur verwiesen werden soll.

Hasse, H. E. Lichens of the Vicinity of Los Angelos II. (Erythea

1896. p. 96.)

— Lichens of the Vieinity of Los Angelos III. (Erythea 1896,

p. 106.)

Neu sind Lecanora redimita Stizenb. und Biatora phaeophora Stizenb,

Hue, ’abbe. Lichens d’Aix-les-Bains. (Journal de Botan. 1896. p. 3,

26, 33, 87, 93, 146, 149, 173, 190.)

Aufzählung der bei Aix-les-Bains gefundenen Flechten mit zahlreichen

diagnostischen Bemerkungen. Neu sind: Psorotichia Claudelii, P, allobrogensis,

Lecanora Harmandi. Angeführt werden im Ganzen 264 Arten mit zahlreichen

Varietäten und Formen.

— Einumeration des lichens de la Savoie de l’Herbier de J. J. Perret

(1762—1836). (Journal de Botan. 1896. p. 221, 239, 252.)

Kurze Aufzählung der Arten. Neue sind nicht dabei.

Kernstock, E. Lichenologische Beiträge VII. (Verhandl. zool. bot.

Ges. Wien 1896. p. 279.)

Verf. untersuchte die Gegend von Ehrenburg im Pusterthal. Die gesammel-

ten Arten sind nach der Unterlage geordnet. Neu sind Imbricaria prolixa var,

corrugata und Aspicilia simulans. Zum Schluss bringt Verf, Ergänzungen zu

„früheren Aufsätzen, darin neu Microthelia minor,

Lorch, W. Uebersicht der bisher in der Umgebung von Marburg

(Hessen) beobachteten Flechten. (Jahresber. des Naturw. Ver. zu

Elberfeld. Hf. VIII. 1896. Abh. p. 1.)

Zusammenstellung der von früheren Sammlern (z. B. Mönch, Uloth, Wende-

roth und vom Verf.) gefundenen Arten.

Malme, G. 0. A. Lichenologiska notiser V. (Botan. Notis. 1896.

p. 173.)

Behandelt Rinodina- Arten.

Morgan, A. P. Liichens, the only »thallophytes«. (Botan, Gaz. 1896.

p. 237.)

Verf, constatirt, dass nach dem gegenwärtigen Brauch „Thallus“ und

„Apothecium“ fast ausschliesslich bei den Flechten angewendet werden,

Müller, J. Ueber einige Flechten vom Monte Rosa. (Ber. d. schweizer.

botan. Gesellsch. VI. 1896. p. 53.)

Nylander, W. Enumcration des Lichens de l’ile Annobon. Paris

(Schmidt) 1896,

Steiner, J. Beitrag zur Flechtenflora Südpersiens. (Sitzber. d. Kais,

Ak. d. Wiss. Wien 1896. math. nat. Cl.)

(117)

Vallot, J. Sur la vitesse de la croissance d’un Lichen saxicole.

(Revue gener. de Botan. 1896. p. 201.)

Beobachtungen über das Wachsthum von Parmelia saxatilis. Daraus geht

hervor, dass im Mittel von 8 Jahren mehrere Exemplare ein Wachsthum zeigten

von 0,52 cm im Durchmesser der Rosette, von 1,69 cm im Umfang und von

13,9 qem auf der Oberfläche pro Jahr,

Wainio, E.A. Lichenes Antillarum a W. R. Elliott collecti. (Journ.

of Botany 1896. p. 31, 66, 100, 204, 258, 292.)

Die Collection (154 Arten) stammt von Dominica u. St. Vincent. Neu sind:

Parmelia dominicana, P. blastica, P. scabrosa, P. tropica, P. cryptochlora, Le-

canora stramineo-albida, P. antillarum, Placodium diplacioides, Sticka damaecorni-

folia (— St. quercizans var. dam. Tuck.), Erioderma physcioides, Psorotichia

americana, Lecidea andita Nyl. f. pluriseptata u. var. submedialis, L. dominicana,

L. mollisiaeformis, L. nana, L. variabilis, L. chlarodes, L. amaura, L. Elliotii,

L. rubicundula, L. subpilosa, L. ochrothelia, L. phaeopsis, L. arthoniopsis»

Gyalecta vincentina, Arthotheliopsis hymenocarpoides, Thelotrema micro-

glaenoides, T. laevius, T. Elliottii, T. homopastoides, T. excavatum, T. vagum,

Pilocarpon leucoblepharum (Nyl.) Wain. var. poichilum, Graphis albida, G. rosea,

Opegrapha sexlocularis, OÖ. brachycarpoides, OÖ, navicularis, OÖ. sordidescens,

Chiodectonrufescens, ArthoniaElliottii, A.microsticta, Staurothele acarosporoides,

Pyrenula aggregans, Pseudopyrenula degenerans, P. endoxantha, Thelenella

turgida, T. scopularis, T. Elliottii, Porina dominicana, P. vincentina, Arthopyrenia

porospora.

Willey, H. Notes on some North American species of Parmelia.

(Botan. Gaz. 1896. p. 202.)

Hauptsächlich diagnostische Bemerkungen zu einigen Arten der Gattung.

Zelenetzky, N. Materiaux pour l’etude de la flore lichenologique de

la Crimee. (Bull. de l’Herb. Boissier 1896. p. 528.)

Aufzählung von 130 Arten.

Zopf, W. Zur biologischen Bedeutung der Flechtensäuren. (Biol.

Centralbl. 1896. p. 593.)

Zopf weist durch Beobachtungen im Freien und durch Fütterungsversuche

nach, dass die meisten Flechtensäuren die Thiere nicht vom Frasse der Flechten

abzuhalten vermögen. So wies er für verschiedene grössere Flechten nach, dass

Milben und Poduriden den Thallus ohne Gefahr verzehren. Für Schnecken und

Raupen war dies bereits bekannt, wird aber noch augenscheinlicher durch

Fütterungsversuche, welche Zopf an Schnecken mit Kartofielscheiben anstellte,

die mit Flechtensäurekrystallen bedeckt waren. Damit wird Zukal’s Ansicht,

dass die Flechtensäuren ein Schutzmittel gegen Thierfrass seien, widerlegt.

Zukal, H. Morphologische und biologische Untersuchungen über die

Flechten. (Sitzber. der k. Ak. der Wiss. in Wien CV. 1. Ab,

März 1896.)

Verf. setzt in der vorliegenden Abhandlung seine interessanten und für die

gesammte Biologie der Flechten wichtige Studien fort. Im ersten Capitel be-

handelt er die Flechten als lichtbedürftige Organismen, wobei er auf die Intensität

des Lichtes, die Durchleuchtung des Thallus und die Abhängigkeit des Baues

des Thallus vom Lichte näher eingeht. Im 2. Capitel bespricht er die repro-

(118)

ductiven Organe der Flechten, die Schlauchfrüchte, Pykniden und Soredien.

Er geht hier näher auf die Entstehung dieser Organe ein und auf die Art, wie

die Erhaltung der Art durch sie gewährleistet wird. Endlich bespricht er im

letzten Capitel den Einfluss des Klimas und des Substrates, sowie die Krank-

heiten des Thallus und der Reproductionsorgane. — Die Abhandlung bietet

ebenfalls so viele interessante und fördernde Momente, dass ihr Studium jedem

Flechtenforscher empfohlen werden muss.

Bambeke, Ch. van. Description d’un mycelium membraneux. (Bot.

Jaarboek Dodonaea VIII. 1896. p. 121.) c. tab. 5.

Beschreibung eines sehr merkwürdigen Myceliums, das sehr ausgedehnte,

weisse Häute bildet.» Die einzelnen Hyphen bilden unregelmässige flache An-

schwellungen, aus den 2—» Fäden hervorgehen können, während häufig die

Anschwellungen selbst flächenförmige Gestalt annehmen. Verf. sieht diese Körper

als Sporen an und spricht ihnen eine gewisse Bedeutung als Reservestoff-

behälter zu.

Bommer, Ch. Sclerotes et cordons myceliens. (M&m. couronn. et

mem. des sav. etrang., publ. par l’Acad. roy. des sc., des lettr. et

des beaux arts de Belgique LIV. 1896.) c. tab. 6.

Buscalioni, L. Il Saccharomyces guttulatus Rob. (Malpighia 1896,

p: 281.) c. tab.

Nach den Untersuchungen des Verf. ist der Pilz ein echter Saccharomyces

mit Sprosszellen- und Sporenbildung. Jede Zelle ist mit einem Kern versehen,

der sich bei Aussprossung oder Sporenbildung theilt.

Chodat, R. et Lendner, A. Sur les mycorhizes du Listera Sonia,

(Bull. de l’Herb. Boissier 1896. p. 265.) c. fig.

Die Verff. beschreiben den Pilz in seinem Verhältniss zu den Wurzelzellen

genauer. Die Conidienfructification weist ihn zum Genus Fusarium. Die Ab-

bildungen zeigen diese Conidien, sowie Chlamydosporen- und Oidienbildung. Leider

fehlt der Beweis der Zusammengehörigkeit dieser Fruchtformen durch Abbildungen.

Holm, J. Chr. Ueber die Aufbewahrung der Hefe in Saccharoselösung.

(Centralbl f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 313.)

Jones, L.R. Potato Blight and Fungicides. (Vermont Agricult. Exp.

Stat. Bull. 49. Burlington 1896.) c. fig.

Von den schädlicheren Pilzkrankheiten der Kartoffeln werden Late Blight

(Phytophthora infestans) und Early Blight (Macrosporium Solani) genauer in ihrer

äusseren Erscheinung beschrieben und Experimente zu ihrer Bekämpfung mit-

getheilt.

Kremer, J. Ueber das Vorkommen von Schimmelpilzen bei Syphilis,

Carcinom und Sarkom. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 1. Abtheil. XX.

1896. p. 63.) c. fig.

Leichmann, G. Ueber die im Brennereiprocess bei der Bereitung der

Kunsthefe auftretende spontane Milchsäuregährung. (Centralbl. f.

Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 281.)

(119)

Lindner, P. Beobachtungen über die Sporen- und Glykogenbildung

einiger Hefen auf Würzegelatine Die Blaufärbung der Sporen von

Schizosaccharomyces octosporus durch Jodlösung. (Centralbl. f.

Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 537.)

Prior, EE Die Beziehungen des osmotischen Druckes zu dem Leben

der Hefe und den Gährungserscheinungen. (Centralbl. f. Bact. u.

Par. 2. Abth. II. 1896. p. 321.)

Seiter, 0. Studien über die Abstammung der Saccharomyceten.

(Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 301, 319.)

Tassi, F. Altre specie nuove di micromiceti III. (Atti della R. Acc.

dei Fisiocritici ser. IV. vol. VIII. Siena 1896.) N. A. IV. (l. c.) N.A.

Tognini, F. Sopra un micromicete nuovo probabile causa di malattia

nel frumento. (Rendic,. del R. Ist. Lomb. di sc. e lett. 2. ser.

vol. XXIX. 1896.)

Acremoniella verrucosa.

Viala, P. et Ravaz, L. Sur le brunissement des boutures de la Vigne.

(Compt. rend. CXXII. 1896. n. 20. p. 1142.)

Wakker, J. H. De Oogvlekkenziekte der bladscheeden veroorzaakt

door Cercospora Vaginae Krüg. (Arch. voor de Java-Suikerindustrie

1896. Afl. 14.) c. tab. .

Verf. untersucht die Lebensgeschichte des Parasiten, theilt die Resultate

seiner gelungenen Impfversuche mit und giebt die Bekämpfungsmaassregeln gegen

die Krankheit an.

Wheeler, H. J. and Tucker, G. M. Upon the effect of Barnyard

Manure and various compounds of Sodium, Caleium and Nitrogen

upon the development of the Potato Scab. (Agric. Exp. Stat. of

the Rhode Island Coll. of Agric. and Mech. Arts. Kingston. Bull.

n. 33.) 1895.

Will, H. Die Methoden, welche bei Reinzüchtung von Hefe etc. zur

Anwendung kommen. Zusammenf. Ref. (Centralbl. f. Bact. u.

Par. 2. Abth. II. 1896. p. 483.)

VI. Moose.

Amann, J. Flore des Mousses suisses. (Ber. d. Schweizer. Botan.

Gesellsch. VI. 1896. p. 6.)

— A propos d’un pedicelle de Mousses. (Rev. bryol. 1896. p. 56.)

Anders, J. Notiz über seltene Moose. (Mittheil. des nordböhmischen

“ Excursionsclubs XIX. 1896. p. 100.)

Bauer, E. Beitrag zur böhmischen Moosflora. (Oesterr. Bot. Zeitschr.

1896. p. 278.)

Neu ist Plagiothecium denticulatum B. et Sch. var. Schaueri,

ER NE EN

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u. Men un; ia ins. 2 a SE Fe rn u a "u en “= go” I £ rz

(120)

Bauer, E. Beitrag zur Moosflora Böhmens. (Deutsche botan. Monats-

schrift 1896. p. 17.)

— Einige neue Laubmoosstandorte aus Böhmen. (Deutsche botan.

Monatsschr. 1896. p. 82.)

Benbow, J. Middlesex Mosses. (Journ. of Bot. 1896. p. 400.)

Ergänzungen zu seinem Verzeichniss der Middlesexmoose.

Bomansson, J. 0. Bryum alandicum sp. nov., Br. versisporum sp.

nov. (Rev. bryol. 1896. p. 90.)

Brenner, M. Mossor, insamlede i Kajana Österbotten och angrän-

sende delar af Norra Österbotten och Norra Karelen. (Botan. Notis,

1896. p. 183.)

Aufzählung von Laub*- und Lebermoosen.

Britton, Elisab. 6. Criticism of „New or less known species of acro-

carpous mosses from North America and Europe“ by N. C. Kind-

berg. (Rev. bryol. 1896. p. 72 u. Bull. de l’'Herb. Boiss. 1896. p. 476.)

Bureau, E. et Camus, F. Les Sphaignes de Bretagne. (Bull. de la

Soc. des sc. nat. de l’Ouest de la France VI. 1896. p. 31.)

Campbell, D. H. Notes on Sphaerocarpus. (Erythea 1896. p. 73.)

ec, ta

Sphaerocarpus müsste nach der Bildungsweise seines Thallus besser unter

die anakrogynen Jungermannien gestellt werden, als unter die Ricciaceen, mit

denen sie sonst übereinstimmt.

Cardot, J. Fontinales nouvelles. (Rev. bryol. 1896. p. 67.)

Fontinalis patula (Insel Vancouver), F. dolosa (England), F. missourica

(Missouri), F. Dixoni (England), F. dalecarlica var. Macounei (Nordamerika), F.

Waghornei (Labrador), F. Mac-Millani (Nordamerika).

Cheney, L. $. Hepaticae of the Wisconsin Valley. (Trans. of the

Wisconsin Acad. of Sc., Arts and Lettr. X. 1894/95, Madison

1895. p. 70.)

Aufzählung der aus Wisconsin bekannten Lebermoose.

Clendenin, J. Stomata on Anthoceros laevis. (Asa Gray Bull. IV.

1896. p. 43.)

Dixon, H. N. The students handbook of British Mosses. London

(Wheldon) 1896. Pr. 18 sh. 6 d.

Evans, A. W. Notes on the North American species of Plagiochila.

(Botan. Gaz. 1896. p. 185.) c. tab. 2.

Revision der nordamerikanischen Arten der Gattung. Es sind folgende

Arten vorhanden: P. interrupta, P. asplenioides, P. columbiana n. sp., P. virginica,

P. floridana n. sp., P. Sullivantii Gottsche n. sp., P, Ludoviciana, P, undata.,

(121)

Geheeb, A. Sur une petite collection de mousses de Californie. (Rev.

mycol. 1896. p. 60.)

40 Arten sind aufgezählt und zum Theil mit Bemerkungen verschen.

— Essai d’une monographie du genre Dawsonia par le Dr. C. Schliep-

hacke et A. Geheeb. Rapp. prelimin. (Rev. bryol. 1896. p. 73.)

Die Arten sind: Dawsonia papuana F. von Müll. n. sp., D. grandis Schl. et

Geh. n. sp., D. gigantea K. Müll. n. sp., D. superba Grev., D. Beccarii Schl. et

Geh. n. sp.

Grilli, C. Muscineae in regione picena lectae. (Bull. della Soc. Bot.

Ital. 1896. p. 158.)

Aufzählung von Laub- und Lebermoosen.

Grout, A.J. A preliminary report of the North American Isotheciaceae.

(Bull. of the Torrey Bot. Club 1896. p. 223.)

Da Namensänderungen vorkommen, seien die Arten aufgeführt:

1. Entodon K. Müll. (Cylindrothecium B. et Sch.). E. cladorrhizans (Hedw.)

K. Müll., E. seductrix (Hedw.) K. Müll., E. Sullivantii K. Müll,, E. Drummondii

‘B. et Sch.) J. et S., E. repens (Brid.) Grout, E. orthocarpus (La Pyl.) Lindb,.,

E. brevisetus (H. et W.) J. et S.

2, Pylaisiella Kindb. (Pylaisia B. et Sch.). P. polyantha (Schreb.) Grout,

P. subdenticulata (Sch.) Kindb., P. intricata (Hedw.) Grout, P. velutina (Sch.)

Kindb.

3. Holmgremia Lindb. (Orthothecium B. et Sch.). H. chrysea (Schwaegr.)

Lindb., H. stri Lorentz.

4. Climacium W. et M., C. dendroides W. et M., C. americanum Brid.

Guinet, A. Recoltes bryologiques aux environs de Geneve. (Rev.

bryol. 1896. p. 91.)

Kaiser, P. Beiträge zur Kryptogamenflora von Schönebeck a. Elbe

(Wissensch. Beilage z. Jahresb. des Realprogymn. z. Sch.) 1896.

Nach einer allgemein orientirenden Einleitung, die hauptsächlich für den

Nichtfachmann bestimmt ist, folgt eine Aufzählung der Gefässkryptogamen und

Moose des Gebietes. Beachtenswerth ist der Nachweis des Tetraplodon

mnioides in der Ebene.

Kindberg, N. C. Om nagra skandinaviska mossarter. (Botan. Notiser

1896. p. 129, 189.)

Anomodon rupestris (Berggr.) Kindb. (Leskea Bergg.), Eurhynchium Bryhnii

n. sp., Bryum subrotundum Brid. subsp. turfaceum Kindb., Bryum submicroste-

gium Kindb., Bryum zonatiforme Kindb.

Liotard, P. V. La flore bryologique des environs de Borne, Haute-

Loire. (Le Monde de Plantes V. 1896. p. 66.)

Liste des Bryologues du monde. 4 suppl. (Revue bryol. 1896.

p. 81.)

Lorch, W. Ueber die Schleimparaphysen von Diphyscium foliosum

Mohr. (Jahresb. des Naturw. Ver. zu Elberfeld Heft VIII. 1896.

Abhd. p. 86.) c. fig.

(122)

An gewissen Paraphysen von Diphyscium finden sich an den Querwänden

glockenförmige Membrananhängsel. Schimper hatte die Entstehung dieser Ge-

bilde unrichtig gedeutet. Verf. weist nach, dass in den jüngsten Stadien

zwischen Cuticula und Membran der Paraphyse eine Schleimansammlung ent-

steht, welche die Cuticula auftreibt und sie schliesslich zum Platzen bringt.

Der Riss erfolgt meist zwischen den zwei Scheidewänden, so dass an jeder der-

selben eine glockenförmige Kapsel zurückbleibt.

Macvicar, $S. M. Hypnum micans Wils, in Inverness-shire, (Journ,

of Botan. 1896. p. 367.)

Matouschek, F. Bryologisch -Nloristische Beiträge aus Böhmen II.

(Sitzungsber. d. naturw. Ver. f. Böhmen Lotos 1895, p. 85.)

Mc Ardie, D. Hepaticae collected in Co. Carlow. (The Irish

Naturalist 1896. n. 8.)

Mc Fadden, E.B. The development of Targionia hypophylla. (Bull,

of the Torrey Bot. Club 1896. p. 242.) c. tab.

Pearson, W. H., A new Hepatic. (Journ. of Botan. 1896. p. 241.)

c. tab.

Plagiochila Stableri aus Westmoreland, England.

Philibert, A. Etudes sur le Peristome IX. (Revue bryol. 1896,

p. 36, 41.)

Die ziemlich umfangreiche Arbeit beschäftigt sich milien anormalen

Peristomen bei den Disticheen, Leucodonteen und Orthotricheen.

— Webera rubella. (Revue bryol. 1896. p. 85.)

Reed, M. Kansas Mosses. (Trans. of Kansas Acad. of Sc. XIV.

1896. p. 156.) c. tab. 36.

Renauld, F. et Cardot, J., New Mosses of North America VI. (Botan.

Gaz. 1896. p. 48.) c. tab. 3.

Gymnostomum calcareum var. winonense Holzinger, Dicranum Demetrii,

D. trachyphyllum, D. subfulvum, Fissidens decipiens var, winonensis, Tricho-

stomum indigens, Ulota crispula var. dolosa, Philonotis venella var. coloradensis,

Anomobryum filiforme var. americanum, Hypnum implexum, H. subeugyrium,

Roberts, M. The mosses of the Upper Dovey. (Journ. of Botan.

1896. p. 330.)

Laubmoose mit kurzen Standortangaben.

Schinz, H. Beiträge zur Kenntniss der afrikanischen Flora IV, (Bull,

de I’Herb. Boissier 1896. p. 409.)

Es werden die neuen Laubmoose beschrieben: Barbula torquatifolia Geh.,

Entosthodon Schinzii Geh., E. rivalis Geh., Taxithelium glabratum Broth. et Geh.

Venturi. Notice sur quelques especes d’Orthotrichum de l’Australie.

(Rev. bryol. 1896. p. 65.)

OÖ. rupestriforme,

(123)

VII. Pteridophyten.

Ascherson, P. Nachtrag zu Equisetum maximum. (Oesterr. Bot.

Ztschr. 1896. p. 201, 251.)

Brebner, 6. On the prothallus and embryo of Danaea simplicifolia

Rudge. (Annals of Bot. 1896. p. 109.) c. tab.

Anatomische Studie über das Prothallium und den jungen Keimling des

Farns.

Britton, E. G. How I found Schizaca pusilla. (Linnean fern Bullet.

IV. 1896. n. 17.)

Clute, W. N. Ferns and fern l.ore. (Commercial Traveler's Home

Magazine VI. 1896. p. 271.)

Cushing, H.B. On the Ferns in the vicinity of Montreal. (Canadian

Record of Sciences. VI. 1895. p. 469, 488.)

Davenport, G. E. Filices Mexicanae VI. (Botan. Gaz. 1896. p. 253.)

c. tab.

Neu sind Acrostichum Pringlei, Aspidium scabriusculum, Aspid. strigillosum,

Asplenium fibrillosum Pringle et Davenp., Aspl. Eatoni, Pellaea membranacea.

Denaiffe, C. et Denaiffe, H. llantes fourageres nouvelles, etude.

Carignan 1896.

— — Manuel pratique de culture fourragere. Paris (Bailliere et fils).

1896.

Druery, Ch. T. Ferns, aposporous and apogamous. (Science Pro-

gress V. 1896. p. 242.)

Finck, H. Lista general de Filices Cordovenses collectados en el

Canton de Cordova, estado de Veracruz. (La Naturaleza Il. 1895.

p. 443.)

Heim, C. Untersuchungen über Farnprothallien. (Flora vol. 82.

1896. p. 329.) c. fig.

Die Schlussfolgerungen des Verf. sind folgende:

1. Das Prothallium von Doodya caudata besitzt zuerst nur normale

Geschlechtsorgane; in vielen Fällen erfolgt Befruchtung; ist Befruchtung nicht

erfolgt, so werden die Geschlechtsorgane anormal und es entstehen am Pro-

thallium Höcker, aus denen später apogame Pfllanzen hervorgehen.

2. Die Regeneration der Farne erfolgt in der Weise, dass bei Verletzungen

in der Nähe der Scheitelregion Neubildungen entstehen, während an älteren

Theilen nur Adventivprothallien auftreten.

3, Durch verminderte Beleuchtung sind wir im Stande, die geschlechtliche

Fortpflanzung der Farne zu unterdrücken.

4. Form und Entwicklung der Prothallien ist für die Systematik höchst

wahrscheinlich bedeutungsvoll.

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2 Mn ne u Fl > 2 ee 3 x: ei ET Ze a. re a at Te

RERBEET SAUGEN REES U a nn Be bad; Sr

(124)

Heinricher, EE Ueber die Widerstandsfähigkeit der Adventivknospen

von Cystopteris bulbifera gegen das Austrocknen. (Ber. d. Deutsch.

Botan. Ges. 1896. p. 234.)

Nachweis, dass ausgereifte Bulbillen mindestens eine 7monatliche Trocken-

heit ertragen können.

Hemsley, W. B. The Flora of Lord Howe Island. (Annales of Bot.

1896. p. 221.)

Eine grosse Zahl von Farnen aufgeführt.

Hooker, Baker et Smith. Les Fougöres. Örganographie et classi-

fication. Paris (Doin) 1896.

Jeanpert. I.’Equisetum variegatum Schl. trouve aux environs de

Paris. (Bull. de la Soc. Bot. de France 1896, D. 272.)

— Sur deux plantes A ajouter A la flore parisienne, Bromus villosus

et Equisetum littorale. (Bull. de la Soc. Bot. de France 1896.

p. 291.)

Lankester. British Ferns. New Ed. London (Shiells) 1896. Pr.

3 sh. 6.d.

Nicotra, L. Ultime note sopra alcune piante di Sardegna. (Malpighia

1896. p. 328.)

Einige Farne genannt.

Palmer, Ch. Notes on Isoetes riparia and Isoetes saccharata. (Botan,

Gaz. 1896. p. 218.)

Preda, A. Contributo alla flora vascolare del Territorio Livornese,

(Bull. della Soc. Bot. Ital. 1896. p. 190.)

Ein Farn genannt.

Renault, B. Notice sur les Calamarides. (Bull. de la Soc. d’Histoire

nat. d’Autun VIII. 1896. p. 1.) c. tab. 8.

Neu beschrieben werden Bornia esnostensis, B. latixylon, Gnetopsis es-

nostensis,

Saunders, C. F. Schizaca pusilla at home. (Linnean Fern Bullet.

IV. 1896. p. 20.)

Schinz, H. Ueber das Vorkommen der Gattung Isoetes in der

Schweiz. (Bull. de l’Herb. Boiss. 1896. p. 525.)

Verf. fand bei Locarno Isoetes echinospora. Er prüft die früheren An-

gaben über das Vorkommen von ]J. lacustris und findet, dass dieselben irrthüm-

lich sind.

Schmidt, H. Nachträge zu der Flora von Elberfeld und Umgebung.

(Jahresb. des Naturw. Ver. zu Elberfeld Heft VIII. 1896. p. 49.)

Auch Pteridophyten genannt,

(125)

Scholz, E. Schlüssel zur Bestimmung der mitteleuropäischen Farn-

pflanzen. (46. Jahresb. d. k. k. Staatsgymnas. in Görz 1896.)

c. tab.

Valentine, C. S. Habits of ferns. (The Garden and forest IX. 1896.

p. 68.) c. fig.

Vallot, J. Sur une station du Pteris aquilina sur un Dyke silicieux

du Bois de Lodeve. (Rev. gen. de Bot. 1896. p. 321.)

Vidal, L. Sur la presence de substances pectiques dans la membrane

des cellules endodermiques de la racine des Equisetum. (Journal

de Botan. 1896. p. 236.) c. fig.

Wilson, Fr. Fern freaks. (Asa Gray Bullet. IV. 1896. p. 36.)

Wüst, E. Zur Flora der Gegend von Sangerhausen. (Deutsche botan.

Monatsschr. 1896. p. 90.) |

Ein Farn genannt.

Zelenetzky, N. Matcriaux pour l’etude des prdles et des fougeres

de la Crimee. (Bull. de !’Herb. Boiss. 1896. p. 550.)

Aufzählung von 26 Arten.

Sammlungen.

Kryptogamae exsiccatae. Cent. Il. Herausgegeben von der bot.

Abtheil d. k. k. naturh. Hofmuseums in Wien. (Schedae dazu in

Annal. d. k. k. Nat. Hofmus. XI. 1896 p. 81.)

Ausgegeben werden 40 Pilze, 10 Algen, 20 Moose und 30 Flechten, meist

aus Oesterreich stammend.

Cavara, Frid. Fungi Longobardiae exsicc. Pug. V. No. 201-250.

1. Physarum contextum Pers.; 2. Cystopus Bliti (Bid.) De B.; 3. Peronospora

Trifoliorum De B.; 4. P. effusa (Grev.) Rab.; 5. P. arborescens (Berk.) De B.;

6. Pilobolus cristallinus Tode; 7. Ustilago segetum (Bull,) Dettm.; 8. U. Caricis

(Pers.) Fuck.,; 9. Puccinia Cirsii lanceolati Schröt.; 10. P. Caricis (Pers.) Fuck.;

11. Aecidium Nymphoides De C.; 12. A. Leucoji Berg.; 13. Hypochnus Sambuci

(Pers.) Fr.; 14. Polyporus sulfureus (Bull.) Fr.; 15. Lepiota denudata Rab.;

16. L. janthina Cooke; 17. Collybia acervata Fr.; 18. Pleurotus ostreatus Jacq.;

19. Exoascus Ulmi Fuck.; 20. Sphaerospora confusa (Cooke) Sacc.; 21. Lachnea

theleboloides A. et Schw.; 22. Lasiobolus equinus (Müll.) Karst.; 23. Lanzia

longiasca (Cav.) Sacc.; 24. Calycium pusillum Flörk.; 25. Erysiphe Umbelliferarum

De B.; 26. Sordaria anserina (Rab.) Wint.; 27. Hypocopra humana Fuck.;

28. Chaetomium Montemartini Cav.n.sp.; 29. Rosellinia amphisphaerioides Sacc.

et Speg.; 30. Physalospora gregaria Sacc.; 31. Laestadia Taversi Cav. n. sp.;

32. Diaporthe nidulans Niessl.; 33. Melanopsamma pomiformis (Pers.) Sacc.;

34. Fracchiaea heterogena Sacc.; 35. Gnomoniella Coryli (Batsch) Sacc.;

36. Pleospora herbarum (Pers.) Rab.; 37. Massaria foedans Fries; 38. Plowrightia

Mezerii (Fr.) Sacc.; 39. Lophidiıum fenestrale (C. et E.) Sacc.; 40. Sporotrichum

Araueorum Cav.n. sp.; 41. Monilia aurea (Link) Gmel.; 42, Verticillium Lactari

(126)

Peck; 43. Ramularia Anchusae Mass.; 44. R. Adoxae (Rab.) Karst.; 45. Cercospora

depazeoides (Desm,) Sacc.; 46. C. cruenta Sacc.; 47. Closterosporium Hirudo

Sacc.; 48. Scptoria Arethusa Penz.; 49, Gloeosporium inconspicuum Cav. n. Sp.;

50. Gl. fructigenum Berk.

Jaczewski, Komarow, Tranzschel. Fungi Rossiae exsiccati. Fasc., III.

l’etropol. 1896.

101. Plasmopora nivea (Ung.) Schröt.; 102. Pl. pygmaea (Ung.) Schröt.;

103. Bremia Lactucae Regal. Centaurea Phrygia; 104. Peronospora Alsinearum

Casp.; 105. P. Ficariae Tul.; 106. P. Trifoliorum De Bar.; 107. P. Potentillae De Bary;

108. P. grisea Ung.; 109. P. Schleideni Ung ; 110. Ustilago Bistortarum (D. C.)

Schröt.; 111. U. Scabiosae (Sow.) Wint.; 112, U, utriculosa (Nees) Corda;

113. Entyloma Chrysoplenii (B. et Br.) Schr. ; 114. Uromyces Hedysari (D. C.) Fuck.

Hedysarum flavescens Reg. et Schm, Turkestan; 115. Puccinia Arenariae (Schum.)

Schröt.; 116. P, Caricis (Schum.) Rab. Aecid.; 117. P, persistans Plowr. Aeccid.;

118. P. Magnusii Kleb. Aeccid.; 119. P. nemoralis Juel, Molinia coerulea; 120, P,

nemoralis Juel Accid. Melampyrum nemorosum; 121. Triphragmium Ulmariae

(Schum.) Lk.; 122. Coleosporium Pulsatillae (Str.) Fr.; 123. Chrysomyxa Ledi

Alb. et Schw. Aecid.; 124. Chr. Pirolae (D. C.) Rostr.; 125. Polyporus applanatus

Pers.) Wallr.; 126. Boletus parasiticus Bull.; 127. Coprinus fimetarius (L.) Fr.;

128. Scleroderma verracosum (Bull.) Pers.; 129. Scl. vulgare Fl. Dan.; 130, Ery-

siphe communis (Wallr.) Fr. var. Umbelliferarum (De Bary) Jacz.; 131. Sporormia

ambigua Niessl; 132. Rosellinia obliquata (Sommerf.) Wint.; 133. Gnomonia seta-

cea (Pers.) Ces. et De Not.; 134. Valsa diatrypa Sacc.; 135. V. Massariana De

Not. Pyenid., 136. Calosphaeria angustata (Fuck.) Nitsch.; 137. C. pusilla (Wahl.)

Karst.; 138. Melanconis Thelebola (Fr.) Sacc.; 139. Nummularia discreta (Schw.)

Tul.; 140. Scirrhia rimosa (Alb. et Schw.) Fuck.; 141. Coccophacidium Pini (Alb.

et Schw.) Rehm; 142. Fabraca Ranunculi (Fr.) Karst.; 143. Phialea cyathoidea

(Bull.) Gill.; 144. Barlaea fulgens (Pers.) Rehm; 145. Geopyxis carbonaria (Alb.

et Schw.) Sacc.; 146. Pustularia vesiculosa (Bull) Rehm; 147. Gyromitra escu-

lenta (Pers.) Fries.; 148. Arthnirium bicorne Rostr.; 149. Cercospora Paridis

Eriks.; 150. Dothiora pyrenophora Berk.

Die sehr schön conservirten Exemplare wurden theils bei Smolensk von

Herrn Jaczewski, theils bei Beresaika, Prov. Nowgorod, und bei Petersburg von

Herrn Tranzschel gesammelt,

Personalnotisen.

Dr. V. Schiffner wurde zum Professor an der deutschen Uni-

versität Prag ernannt.

Prof. Dr. H. Schenck hat die durch Dippel's Abdankung frei

gewordene Professur zu Darmstadt erhalten.

Dr. A. Maurizio wurde zum Assistenten und Hilfslehrer an der

Versuchsanstalt und Schule für Wein-, Obst- und Gartenbau in

Wädensweil ernannt.

Dr. E. Knoblauch hat sich an der Universität Giessen habilitirt.

(127)

F. Noack (Alzey) ist nach Brasilien berufen, um in Campinas

(im Staate S. Paulo) ein phytopathologisches Laboratorium einzurichten

und zu leiten.

Prof. Dr. C. Wilhelm wurde zum ordentlichen Professor an der

k. k. Hochschule für Bodenkultur in Wien ernannt.

Prof. L. Underwood wurde zum Nachfolger von Prof. Britton,

der zum Director des New-Yorker botanischen Gartens erwählt wurde,

am Columbia College in New-York ernannt.

Dr. F. Tognini ist zum Conservator am botanischen Garten zu

Pavia ernannt worden.

Prof. Dr. A. Zimmermann in Berlin ist zum Vorsteher der Ab-

theilung für Kaffeecultur in Buitenzorg ernannt und bereits dorthin

abgereist.

M. A. Howe ist von seiner Stellung als Instructor in Crypto-

gamic Botany an der Californian University zurückgetreten; an seine

Stelle tritt W. J. V. Osterhout.

Prof. Dr. O. Brefeld wurde zum Geheimen Regierungsrath ernannt.

Prof. Dr. P. Ascherson wurde zum Iöhrenpräsidenten des Bo-

tanischen Vereins der Provinz Brandenburg erwählt.

Baron Ferdinand von Müller, Director des botanischen Gartens

in Melbourne, ist gestorben.

Der Deutsche Fischerei-Verein erneuert folgende Preisfrage:

Es sollen die Entwicklungsgeschichte und die Lebensbedingungen des

Wasserpilzes Leptomitus lacteus — mit besonderer Berücksichtigung seines

Auftretens und Wiederverschwindens in verunreinigten Wässern — untersucht

werden.

Preis 600 M. Einlieferungstermin bis 1. Mai 1897.

Die Einsendung hat eingeschrieben zu erfolgen an Prof. Dr. Weigelt,

Berlin SW., Zimmerstr. 90/91.

Hierzu eine Beilage: „Der Buddhismus“ von Leonid Kaschezin in Leipzig.

Redaction: Prof, Georg Hieronymns

unter Mitwirkung von Paul Hennings und Dr. G. Lindau iu Berlin,

Druck und Verlag von (. Heinrich in Dresden.

Anseigen.

Im unterzeichneten Verlage ist erschienen und durch jede

Buchhandlung des In- und Auslandes zu beziehen:

Liehenologische Untersuchungen

von

Dr. Gustav Lindau

Privatdocent der Botanik an der Universität Berlin.

Heft |.

Ueber Wachsthum und Anheftungsweise der Rindenflechten.

Mit 3 lithographirten Tafeln.

Gross 4°. VI und 66 Seiten. Preis M. 8.-—.

Dresden-N., 1896. C. Heinrich

Verlagshandlung.

Von dem Unterzeichneten sowie durch jede Buchhandlung

des In- und Auslandes ist zu beziehen:

Die Laubmoose

des

Grossherzogthums Baden

von

Wilh. Baur

Apotheker in Ichenheim.

Sonderabdruck aus „Mittheilungen des Badischen Botanischen Vereins“.

Jahrgang 1894.

80 Seiten 8°. Preis Mark 1,60.

Dresden-N. C. Heinrich

Verlagshandlung.

Repertorium

für

kryptogamische Literatur

Beiblatt zur „Hedwigia“.

Band ZAAV, Meseinber Deren s

1896. Nr. 6.

I. Allgemeines und Vermischtes.

Atkinson, G. F. A. N. Prentiss. (Science 1896. p. 523.)

Beleze, Marguerite. Supplement A la liste des plantes rares ou

interessantes des environs de Montfort-l’Amaury etc. (Bull. Soc.

Bot. de France 1896. p. 346.)

Wenige Farne und eine Nitella genannt.

Borgensen. F. og Hansen, C. 0. Plante samlede paa Faergerne i 1895.

(Botan. Tidssk. XX. 1896. p. 143.) c. fig.

Angeführt werden ausser Farnen eine grössere Zahl von Moosen, Algen

und Pilzen, unter letzteren n. A.

Corboz, F. Flora aclensis. (Bull. de la Soc. Vaudoise des sc. nat.

XXXI. 1895. Lausanne p. 227.)

Die Listen umfassen nur Kryptogamen, und zwar aus allen Abtheilungen.

Deflers, A. Plantes de l’Arabie meridionale recueillies pendant les

anndes 1889, 1890, 1893 et 1894. (Bull. Soc. Botan. de France

1896. p. 321.)

Farne und Pilze, sowie wenige andere Kryptogamen genannt.

Degagny, Ch. Recherches sur la division du nouveau cellulaire chez

les vegetaux. (Bull. Soc. Botan. de France 1896. p. 332.)

Desplantes, FE Louis Pasteur. Limoges (Ardant & Co.) 1896.

De Toni, G. B. In morte di Francesco Saccardo. (La Nuov. Notar.

1896. p. 154.)

Geneau de Lamarliere, L. Catalogue des cryptogames vasculaires et des

Muscindes du Nord de la France. Fin. (Journ. de Botan. 1896.p 323.)

Groenland, Chr. Tillaeg til Islands Kryptogamenflora. (Botanisk.

Tidsskr. XX. 1895. p. 90.)

Aufgezählt werden Flechten (103 Nummern), Lebermoose (44 Nummern),

Laubmoose (161 Nummern).

Klebs, G. Die Bedingungen der Fortpflanzung bei einigen Algen

und Pilzen. Jena (G. Fischer) 1896. 543 u. XVII. pag. Mit

aa 0 15 Fig, Pr. 18 M.

Hedwigia Ba, XAXV, 1890, 11

(130)

Der vorliegende Band bildet den ersten eines zweibändigen Werkes,

welches die Fortpflanzungsphysiologie der niederen Organismen behandeln soll.

Es werden hier nur die Beobachtungsresultate sehr ausführlich mitgetheilt,

während der später erscheinende zweite Band die allgemeinen Folgerungen

enthalten soll.

Bei der ungeheuren Menge der Thatsachen, die das Werk bietet, muss

naturgemäss auf eine vollständige Besprechung aller behandelten Formen ver-

zichtet werden. Bei der ausserordentlichen Bedeutung der Untersuchungen

aber für die Auffassung der Fortpflanzungserscheinungen überhaupt, seien ein-

zelne der interessanteren Thatsachen hier wiedergegeben.

Wichtig ist vor allen Dingen die Auflassung, von der der Verf. ausgegangen

ist. Er stellte sich die Frage, von welchen äusseren Bedingungen das Auf-

treten dieser oder jener Fortpflanzungsart abhängig sei, nachdem er einmal

nachgewiesen hatte, dass ein regelmässig stattfindender Generationswechsel

ausgeschlossen sei. Um dieser Frage beizukommen, waren jahrelange Versuche

nothwendig, welche die Algen und Pilze den verschiedensten Bedingungen

aussetzten, Es wurde der Einfluss der Feuchtigkeit, der Temperatur, des

Lichtes, der Zusammensetzung der Nährlösungen geprüft, ferner mehrere Be-

dingungen abwechselnd oder gleichzeitig geboten. Alle diese mühevollen Ver-

suche führten zu dem Resultat, dass es ganz von äusseren Bedingungen ab-

hängt, ob eine Alge Zoosporen oder Gämeten oder sonstige Fortpflanzungsarten

erzeugt. Wir haben es also völlig in der Hand, ob wir den Organismus zu der

einen oder anderen Propagationsform veranlassen wollen,

So werden bei Vaucheria repens mit absoluter Sicherheit Zoosporen er-

halten, wenn die mehrere Tage feucht und hell cultivirte Alge mit Wasser

begossen wird oder wenn sie aus einer verdünnten Nährsalzlösung in reines

Wasser übertragen wird oder aber wenn Culturen in Wasser oder sehr ver-

dünnter Nährsalzlösung verdunkelt werden. Geschlechtsorgane werden immer

erzeugt, sobald die Fäden in eine 2—-4%/, Rohrzuckerlösung bei heller Beleuch-

tung gehalten werden. Dass neben den angegebenen Methoden noch andere

Modificationen von Bedeutung sind, wird genauer vom Verf, erörtert und mit

Beispielen belegt. Ueberhaupt ist der Einfluss aller nur denkbaren äusseren

Verhältnisse geprüft und geschildert worden.

Bei Hydrodictyon utriculatum gelingt das Hervorrufen der Zoosporenbildung

durch Ueberführung der Alge aus verdünnter Nährsalzlösung in Wasser oder

durch Ueberführung aus strömendem in ruhiges Wasser. Gametenbildung kann

erzeugt werden, wenn gesunde Netze in wenig Wasser hell gestellt werden.

Jedoch lässt sich diese Fortpflanzungsart nicht mit so absoluter Sicherheit er-

zielen, wie die Zoosporenbildung, da die Netze leicht indifferent werden und

dann für weitere Versuche ungeeignet sind,

Ein wichtiges Capitel ist das über Botrydium, Hier weist Verf. nach, dass

in den Untersuchungen von Rostafinski und Woronin zwei ganz verschiedene

Algen in ein und denselben Entwickelungskreis gezogen sind. Is lässt sich ein

Organismus (Protosiphon botryoides (Kütz.) Klebs nov. gen.) herausheben, der

sich durch Teilung, unbewegliche Sporen und Gameten fortpflanzt, während

Botrydium granulatum nur einwimperige ungeschlechtliche Zoosporen besitzt.

Diesem Kapitel sind einige einleitende Bemerkungen über Reinculturen von

Algen vorausgeschickt.

Aus der Untersuchung der Spirogyren sei blos erwähnt, dass es Verf.

gelang, parthenogenetische Dauersporen zu erzeugen, wenn er Fäden mit

Copulationsfortsätzen in stärkere Zuckerlösungen brachte. Copulation führte

eine schwache Zuckerlösung mit heller Belichtung stets herbei. — Ein längeres

zeugte bei Dunkelheit, ebenso wie in stärkeren Zuckerlösungen Zoosporen. Um

Antheridien zu erzielen, genügte begrenzte Wassermenge, relativ geringer Gehalt

von Nährsalzen und Licht. — Weitere Beobachtungen finden sich von Ulothrix,

Hormidium, Conferva etc. Die Gattung Bumilleria konnte genauer untersucht

und ihre Stellung bei den Confervaceen bestimmt werden (neue Art B. exilis).

Hier wie auch an anderen Stellen nimmt Verf. Gelegenheit, die pleomorphistischen

Ideen Chodat’s und Borzi’s zu widerlegen. — Neu ist ferner Chlamydomonas media.

Der 2. viel kürzere Abschnitt behandelt die beiden Pilze Eurotium repens

und Mucor racemosus. Bei ersterem werden die Bedingungen untersucht, unter

denen sich Conidien oder Perithecien bilden, beim zweiten gezeigt, welche

äussere Umstände die Bildung von Sporangien, Gemmen etc. veranlassen. Jeden-

falls geht aus diesem letzteren Abschnitt hervor, dass die Bedingungen für die

einzelnen Fructificationsbedingungen bei den Pilzen bei weitem verwickeltere

und weniger deutliche sind als bei den Algen.

Sobald der allgemeine Theil, über den Verf. schon kurz auf der Natur-

forscherversammlung in Lübeck in einem Vortrage referirt hat, erschienen ist,

wird sich weitere Gelegenheit bieten, auf die bedeutsamen Untersuchungen,

die einen Markstein in der Fortpflanzungsphysiologie bilden, zurückzukommen.

Schiller, K. Ueber seltenere Kryptogamen des botanischen Gartens

in Dresden. (Isis 1896. p. 4.)

Moose, Algen und Pilze genannt.

Schinz, H. Die Pflanzenwelt Deutsch - Südwest-Afrikas. (Bull. de

l’Herb. Boissier 1896. App. IV.)

In dem 1. Theil, der eine Aufzählung der bisher gefundenen Pflanzen ent-

hält, sind die wenigen bisher bekannten Kryptogamen mit aufgenommen.

Shimek, B. Notes on the Flora of Jowa. (Bull. from the Labor. of

Nat. Hist. of the State Univ. of Jowa Ill. n. 4, 1896. p. 195.)

Liste von Phanerogamen, Pteridophyten und Algen.

ll. Myxomyceten.

Grimm, M. Zur Kenntniss der Myxomyceten des Gouvernements

St. Petersburg. (Scripta Bot. Univers. Petropolitanae V. 1896.

p. 157.) Russ. mit deutsch. Res.

III. Schizophyten.

Lagerheim, G. v. Ueber Phaeocystis Poucheti (Har.) Lagerh., eine

Plankton-Flagellate. (Öfv. af Vet. Akad. Förhandl. Stockholm

1896. 17 pag.) c. fig.

Leichmann, G. Die Benennung der Milchsäure-Bacillen. (Ztschr. f.

Spiritusindustr. XIX. 1896. p. 305.)

Lunt, J. On Bacillus mesentericus niger. (Centralbl. f. Bact. u. Par.

2. Abth. II. 1896. p. 572.)

Miyoshi, M. Physiological Study on Ciliata. (The Tokyo Botan,

Magaz. 1896. Pt. I. p. 184.) Japan.

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Miyoshi, M. I’'hysiologische Studien über Ciliaten. (l. c. Pt. II. p. 43.)

Verf, theilt Versuche über Ernährung einiger Protozoeen mit. Da die bc-

handelten Arten echte Thiere sind, so sei hier nur auf die Arbeit hingewiesen.

Nobbe, F. u. Hiltner, L. Ueber die Anpassungsfähigkeit der Knöll-

chenbacterien ungleichen Ursprungs an verschiedene Leguminosen-

gattungen. (Die landwirthschaftl. Versuchsstation XLVII. 1896,

p. 257.) ce. tab. 4.

Pammel, L. H. and Pammel, Emma. A contribution on the gases

produced by certain bacteria. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth.

Il. 1896. p. 633.) c. tab.

Roze, EE Sur une nouvelle Cyanophycde et un nouveau Microcoque.

(Journ. de Bot. 1896. p. 319.) c. fig.

Aplococcus natans (nov. gen.) und Micrococcus mucivorus.

— Le Clonothrix, un nouveau type generique de Cyanophycees.

(Journ. de Botan. 1896. p. 325.) c. fig.

Die Diagnose der neuen Gattung ist: Trichomata elongata, articulata, sim-

plicia vel pseudoramosa, + distincta vaginata. Propagatio cellulis artıculorum

disjunctis vel e medio fractarum vaginarum emergentibus. Generatio dubia,

ampullis exiguis, apice evanescentibus, in quibus plasma fere hyalinum primo

vacuolas deinde granulos paucos continet. — Die einzige Art ist C, fusca an

den Wänden eines alten Brunnens.

Smith, E. F. The bacterial diseases of plants: a critical review of

the present etate of our knowledge Il. (The American Natural.

1896. p. 716.)

Stutzer. Neuere Arbeiten über die Knöllchenbacterien der Legu-

minosen und die Fixierung des freien Stickstoffes durch Organismen.

Zusammenf. Ref. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896.

p. 650.)

Wittlin, J. Bacteriologische Untersuchung der Mineralquellen der

Schweiz. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 579.)

IV. Algen.

Agardh, J. G. Analecta algologica Ill. Lund (Gleerup) 1896. c. tab.

er. 300 Ur,

Barton, E. S. Cape Algae. (Journ. of Botany 1896. p. 193.) c. fig.

Neu ist Streblonema Codii.

De Wildeman, E. Flore des Algues de Belgique. Bruxelles (A. Castaigne)

1896. 485 pag. mit Textfig.

Die von der belgischen Akademie mit dem Preis Crepin ausgezeichnete

Flora wird von einem Vorwort von L. Errera eingeleitet. Errera weist darauf

hin, dass eine Algenflora von Gesammtbelgien bisher ganz gefehlt habe und dass

für Abfassung eines solchen Werkes ein dringendes Bedürfniss vorlag. — Der

(133)

Verf. hat sich seit vielen Jahren mit der Algenflora seiner Heimath beschäftigt

und ist deshalb wie kein Anderer befähigt, eine solche Flora zu verfassen. In

einigen kurzen Einleitungscapiteln wird das Nothwendigste über die Verbreitung

der Algen in Belgien auseinandergesetzt, sowie einige Bemerkungen über die

Entwicklung und die Präparation von Algen gemacht. Interessant ist das Zahlen-

verhältniss der einzelnen Algenklassen, sowie der Arten, die aus den einzelnen

Provinzen bekannt sind. Bei einer Gesammtzahl von 1179 Arten ergiebt sich

auf die einzelnen Gruppen folgende Vertheilung: Chlorophyceen 387, Diatomeen

613, Phaeophyceen 51, Florideen 78, Cyanophyceen 50 Arten.

Ueber die Anordnung des Stoffes ist wenig zu sagen. Die einzelnen Gattungen

sind leicht durch gute dichotomische Tabellen zu bestimmen. Die Arten sind

ohne Schlüssel aufgeführt. Eine ausführliche französische Beschreibung lässt

die Art leicht erkennen. Auf die Standortsverhältnisse ist besonderer Werth

gelegt. Sehr anzuerkennen ist die Uebersichtlichkeit des Druckes, indem durch

verschiedenen Satz jede Art und jede Abtheilung der Beschreibung sich leicht

abhebt. Sehr brauchbar sind die kleinen Zeichnungen, welche die wichtigeren

Arten begleiten.

Zweifellos wird diese Flora die algologischen Studien in Belgien neu an-

regen und vertiefen. Im Allgemeinen wird aber auch den angrenzenden Ländern,

für die der Florenbestand mehr oder weniger derselbe ist, eine bedeutsame

Anregung gegeben werden, um ihrerseits ähnliche Arbeiten in Angriff zu nehmen.

Es fehlt sowohl für Frankreich wie für Deutschland ein neueres Werk, das den

Bestand der Algenflora aufführt. Jedenfalls wird die vorliegende Flora für alle

Diejenigen ein unentbehrliches Handbuch werden, welche sich eingehender mit

den Algen beschäftigen.

Eichler, B. Beiträge zur Algenflora der Gegenden von Miedzyrzee,

Gouv. Siedlee. (Physiograph. Denkschr. Warschau XIV. 1896.

p. 119.) Polnisch.

Gomont, M. Contribution A la flore algologique de la Haute-Auvergne.

(Bull. Soc. Botan. de France 1896. p. 373.) c. tab. 2.

Die Aufzählung der Algen, die von zahlreichen kritischen Bemerkungen

begleitet ist, umfasst hauptsächlich Cyanophyceen und Chlorophyceen. Neu

sind Tolypothrix fasciculata, Oocystis solitaria Wittr. var. maxima und die

Gattung Heribaudiella. Dieses interessante Genus vermehrt die Zahl der Süss-

wasserphacophyceen. Der Thallus ist lächenförmig, aus einzelnen laden be-

stehend, mit Randwachsthum. Sporangien einzellig, endständig an den Fäden,

einzeln. Weitere Fructificationsorgane unbekannt. Die einzige Art in Bächen

der Auvergne ist H. arvernensis.

Rodriguez y Femenias, J. J. Datos algolögicos. (Anal. de la Soc.

Espagn. de Hist. Nat. XXIV. 1896. p. 155.) c. tab. 2.

Borge, 0. Ueber die Variabilität der Desmidiaceen. (Oefv. Vet.

Akad. Förh. Stockholm 1896. 6 pag.)

— Uebersicht der neu erscheinenden Desmidiaceen-Literatur VI.

(La Nuova Notarisia 1896. p. 109.)

Yasuda, A. Fuglena viridis found in the Pond Shinobazu at the End

of June 1896. (The Tokyo Bot. Magaz. 1896. p. 216, 253.)

Japan. c. fig.

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(134)

Brun, J. Diatomees miocenes. (Le Diatomiste II. 1896. p. 229.)

Brun, J. ct Barbo, @. Diatomees miocönes. (Le Diatomiste 1896. n. 24.)

Cox, C. F. Some recent Advances on the Determination of Diatom

Structure. (Journ. New-York Micr. Soc. XII. 1896. n. 3. p. 24.)

C-%aD, 2,

Deby, J. Le genre Surirella. (Bull. de la Soc. belge de microsc. 1896.)

Oestrup, E. Diatomeerne i nogle islandske Surtarbrand-Lag. (Meddel.

f. Dansk. Geol. Foren. Kopenhagen 1896.) c. fig.

— Diatomees marines du Grönland oriental. Kopenhagen 1896.

Gruber, E. Ueber Aufbau und Entwicklung einiger Fucaceen. (Biblio-

theka botanica Heft XXXVII.) Stuttgart (E. Naegele). Mit

7 Taf. 1896.

Verf. liefert in dieser Arbeit einen werthvollen Beitrag zur Kenntniss der

Fucaceen. Das Hauptgewicht liegt in der Untersuchung der Scheitelzellen und

des Sprossaufbaues. Gerade die Untersuchung der ersteren lieferte Resultate,

die sich für die Charakterisirung der einzelnen Unterabtheilungen sehr gut ver-

wenden lassen.

Das Material, das Verf. untersuchte, war sehr reichhaltig und umfasste auch

die seltneren Gattungen. Die Gruppirung der Gattungen ist etwas verändert

worden, da sich die Unterfamilien schärfer als bisher definiren liessen. Am

besten lassen sich die Resultate der Arbeit übersehen, wenn die Eintheilung

des Verf. hier wiedergegeben wird.

1. Durvilleae. Der Bestand dieser Unterfamilie bleibt unverändert. Die

Gattungen sind Durvillea, Sarcophycus, Ecklonia und Splachnidium.

2. Hormosireae. Die beiden hierher gehörigen Gattungen Hormosira

und Notheia sind schr genau untersucht worden. Beide Gattungen besitzen

wenig diflerenzirte Sprosse. Am Scheitel sind 4 (oder 3) Scheitelzellen vor-

handen, im Gegensatz zu den anderen Fucaceen. Die Conceptakeln sind un-

regelmässig über den ganzen Spross vertheilt.

3. Fuceäe. Fucus, Pelvetia, Xiphophora, Ascophyllum, Axillaria, Seiro-

coccus, Scytothalia, Phyllospora, Marginaria. Die Scheitelzelle dieser Unter-

familie ist 4seitig. Die Verzweigung ist gabelig oder monopodial oder beides

vereint. Die Conceptakeln stehen auf den wenig veränderten Haupt- und

Nebensprossspitzen oder auf besonderen Sexualsprossen; sie sind also bestimmt

lokalisirt. Im Oogonium befinden sich 1—8 Eier. Verf. rechnet Xiphophora

zu den Fuceae, während Oltmanns sie noch in die folgende Abtheilung brachte.

4. Loriformes. Hier würde nur die Gattung Himanthalia bleiben.

5. Cystosireae. Diese Unterfamilie wird je nach dem Aufbau in

2 Gruppen zerlegt. A. Bilatorale Cystosireen mit den Gattungen Halidrys,

Bifurcaria, Carpoglossum, Myriodesma, Platythalia und Platylobium. B. Radiäre

Cystosireen mit Cystosira, Cystophyllum, Hormophysa, Coccophora, Scaberia,

Cystophora und Landsbergia. Bei den Cystosireen ist die Scheitelzelle 3seitig.

Die Verzweigungen sind stets monopodıial, radiär oder bilateral, oder beides.

Conceptakeln lokalisirt in den oberen Enden der Langtriebe oder in besonderen

Kurztrieben. Im Oogonium nur 1 Ei.

(135)

6. Sargasseae. Die Untersuchung ergab nur eine Bestätigung der be-

kannten Verhältnisse. Die Gattungen sind Anthophycus, Carpophyllum, Con-

. tarinia, Pterocaulon, Sargassum und Turbinaria.

Die hier nur kurz skizzirten Resultate sind durch eine grosse Zahl von

guten Figuren erläutert, unter denen namentlich die Habitusbilder auch für den

Systematiker von grossem Werth sind. Für unsere Kenntniss der Fucaceen

bedeutet die Arbeit einen entschiedenen Fortschritt.

Sauvageau, C. Sur la conjugaison des zoospores de l’Ectocarpus

siliculosus. (Compt. rend. 1896. t. CXXIH. n. 9. p. 431.)

'Brebner, & On the Origin of the filamentous thallus of Dumontia

filiformis. (Journ. of the Linn. Soc. London XXX. 1895. p. 436.)

c. tab. 2.

Anatomische Untersuchung des Thallus.

Okamura, K. Contribution to knowledge of the marine Algae of

Japan II. (The Tokyo Botan. Mag. 1896. Pt. II. p. 21, 33.)

©, tab.

Beschrieben werden Callophyllis crispata, Plocamium ovicornis, Delesseria

radicosa, Rytiphloea angusta, Dasya pulchra, Dasya notoensis, Ceramium pani-

culatum, Ceramium japonicum.

— Contribution to the knowledge of the Marine Algae of Japan II.

(le, P6s1.p 388) Tapan,

V. Pilze.

Bertrand, G. Sur la presence simultande de la laccase et de la

tyrosinase dans le suc de quelques Champignons. (Compt. rend.

1896. t. CXXII. n. 11. p. 463.)

Biönski, F. Ein Beitrag zur Pilzflora Polens. (Physiograph. Denkschr.

Warschau. XIV. 1896. p. 62.) Polnisch.

Bresadola, 6. Alcuni funghi della Somalia e della Colonia Eritrea.

(Ann. del R. Istit. Bot. di Roma. VI. 1896. p. 177.) N. A.

Eliasson, A. G. Svampar ur C. J. Johansons herbarium. (Botan.

Notis. 1896. p. 205.) ’

Aufzählung einer grossen Zahl von Arten aus Schweden.

Fautrey, F. et Lambotte. Esp£ces nouvelles de la Cöte-d’Or. (Rev.

mycol. 1896. p. 142.) N. A.

Hariot, P. Note sur deux nouveaux Champignons de France. (Journ.

de Botan. 1896. p. 299.)

Jamin, V. Contribution A la flore cryptogamique de la Sarthe. Cham-

pignons (suite). (Le Monde des plantes. VI. 1896. n. 83. p. 4.)

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(136)

Istvänffi, G. Ueber die Rolle der Zellkerne bei der Entwicklung

der Pilze. (Termeszetrajzi Füzetek. Budapest. 1896. p. 330.)

Ungar. c. tab. 3,

Vergl. den deutschen Text im Ber. d. Deutsch. Bot. Ges. 1895,

Magnus, P. Beitrag zur Pilzflora von Franken, insbesondere der Um-

gegend von Nürnberg. (Abhandl. d. Naturh. Ges. zu Nürnberg.

X. 1895. Nürnberg 1896. p. 121.)

Möller, A. Ueber eine mycologische Excursion nach Blumenau in

Brasilien. Vortrag. (Ber. über die Senckenberg. naturf. Ges. in

Frankfurt a. M. 1896. p. 151.)

Neger, F. W. Uredineas i Ustilagineas nuevas Chilenas. (Anales de

la Universid. Santiago. 1896. t. XCII. p. 771.) N. A.

Peck, C. H. New species of Fungi. (Bull. Torrey Bot. Cl. 1896.

p. 411.) N. A.

Rostrup, E. Mykologiske Meddedelser VI. (Botan. Tidsskr. XX.

1896. p. 126.) c. fig. Mit franz. Resume p. 137.

Bemerkungen zu bekannten und Beschreibung neuer Arten.

Sorauer, P. Bericht über eine mit Unterstützung des Kgl. Preuss.

landwirthsch. Minister. unternommene Umfrage betreffs der im Jahre

1894 durch Krankheiten und Feinde in Preussen verursachten

Erntebeschädigungen. (Ztschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 210.)

Swingle, W. T. Bordeaux mixture. (N. S. Dep. of Agric. Div. of

Veg. Physiol. and Pathol. Bull. IX.) Washington 1896.

Underwood, L. M. Mycology in the Southern States. (The Garden

and Forest IX. 1896. p. 263.)

Wakker, J. H. De Schimmels in de Wortels van het Suikerriet II,

en III. (Arch. voor de Java-Suikerindustrie 1896. Afl. 18.) c. tab. 2.

Verf. beschreibt 2 neue Pilze an den Wurzeln des Zuckerrohrs.

Webber, H. J. Melanose of the Orange. (Florida Farmer and Fruit

Grower VII. 1896. p. 419.)

— Some results of the year's work in the investigation of plant

diseases at the subtropical laboratory. (Proc. of the VIII. Ann.

Meeting Florida State of Hortic. Soc. 1895. p. 53.)

Hori, S. On the Smut of Japanese Cereals. (The Tokyo Botan.

Magaz. 1896. Pt. I. p. 213.) Japan.

Britzelmayr, M. Materialien zur Beschreibung der Hymenomyceten.

(Bot. Centralbl. LXVII. 1896. p. 108, 137.)

(137)

Burt, E. A. The Phalloideae of the United States. (I'he Botan. Gaz.

1896. p. 273.) c. tab. 2,

Verf. schildert die Entwicklung des Clathrus columnatus ausführlich und

bespricht eingehend die Differenzen zwischen Clathreen und Phalleen. Die phylo-

genetischen Folgerungen daraus sind früher bereits von Möller gezogen.

Dupain, V. Note sur un certain nombre d’Agaricindes r&coltees dans

les environs de la Mothe-Saint-Heray. {Bull. de la Soc. bot. des

Deux-Sevres 1896.)

Ellis, J. B. and Macbride, Th. H. Nicaraguan Hymenomycetes. (Bull.

from the Labor. of Nat. Hist. of the State Univ. of Jowa III. n. 4.

1896. p. 191.)

In der Aufzählung auch neue Arten.

Eriksson, J. Hvad är sädesrost och hvad kan göras mot densamma?

Anvisningar och rad till Sveriges sädesodlare. Stockholm (Nordstedt

e Soner) 1896. c. tab. Pr. 1,25 Kr.

— Welche Grasarten können die Berberitze mit Rost anstecken?

(Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 193.)

Ferry, R. Deux especes differentes de basidiomycetes, l'une a 2 spores,

l’autre a 4 spores, derivant de la neme forme conidiale d’apres

M. Möller. (Rev. mycol. 1896. p. 141.)

Istvanffy, G. A Magyar Birodalom Geasterfelei. (Pötfüzetek. a ter-

meszettuttom. Közlönyhöz XXVIIL 1896. p. 75.) ec. fig.

Möbius, M. Ueber den Hausschwamm. Vortrag. (Ber. über die

Senckenberg. naturf. Ges. in Frankfurt a. M. 1896. p. XCVII)

Rostrup, E. Biologiske Arter ogRacer. (Botan. Tidsskr. XX. 1896. p. 116.)

Shirai, M. Descriptions of Some New Japanese Species of Exobasi-

dium. (The Tokyo Bot. Magaz. 1896. Pt. I. p. 228.) Japan. (l. c.

Pt. I.:p. 51.) Engl. c. tab. N. A.

Störmer, C. Om en art Puccinia paa Polemonium coeruleum. (Botan.

Notis,. 1896. p. 214.)

Unter dem Namen Puccinia Polemoniü beschreibt Verf. eine auf der Unter-

seite der Blätter von Polemonium coeruleum entdeckte Uredince, welche meiner

Meinung nach mit der homonymen von Dietel und Holway (Botan. Gaz. 1893

p. 255 u. Sacc. Syll. Fung. XI. p. 193) aufgestellten Art übereinstimmt. Die

Teleutosporen sind 35—50 u lang, 12—19 « breit, mit einem 50—60 M langen

Stielchen versehen. ]. B. De Toni (Padua).

Underwood, L. M. and Earle, F. $. The distribution of the species

of Gymnosporangium in the South. (The Botan. Gaz. XXIl. 1896.

2.,899,)

— Notes on the Pine-inhabiting Species of Peridermium. (Bull.

Torrey Bot. Cl. 1896. p. 400.)

Notizen über Peridermium acicolum, P. orientale und P. cerebrum

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(138)

Chatin, A. Truffes de Grece (Terfezia Gennadii). (Compt. rend.

CXXIII. 1896, p. 537.)

— Un Terfas d'’Espagne et trois nouveaux Terfas au Maroc, (Bull.

Soc. Botan. de France 1896. p. 397.) N. A.

Jaczewski, A. de. Monographie des Tuberacdes de la Suisse. (Bull.

de l’Herb. Boiss. 1896. p. 591.)

In der Schweiz finden sich Choiromyces (mit 1 Art), Tuber (9), Elapho-

myces (2).

Lambotte, E. Evolution des spores de Pyr@nomycetes, groupe des

Sphaeriacdes. (Rev. mycol. 1896. p. 123.)

Neger, F. Ueber eine neue Fruchtform eines Fumago-ähnlichen

Pilzes, Antennaria scoriadea Birk. (Centralbl. f. Bact. u. Par.

2. Abth. II. 1896. p. 613.)

Verf. beschreibt bei Antennaria scoriadea eine Coniothecium -ähnliche

Conidienform.

Nichols, Mary A. The morphology and development of certain

Pyrenomycetous Fungi. (The Botan. Gaz. 1896. p. 301.) c. tab. 3.

Untersucht wurden Vertreter der Gattungen Teichospora, Teichosporella,

Ceratostoma, Hypocopra. Bei der ersteren entsteht aus einer Mycelzelle ein

compactes pseudoparenchymatisches Gewebe, von dem aus einzelnen Zellen die

Asken entspringen. Anders bei Hypocopra, wo ein Mycelzweig eine Woronin'sche

Hyphe bildet. Von irgend einer Ändeutung von Geschlechtlichkeit fand sich

keine Spur.

Patouillard, N. Cyclostomella, nouveau genre d’Hemihysteries. (Bull.

de l’Herb. Boissier. 1896. p. 655.) N. A.

Rabenhorst's Kryptogamenflora. l’ilze Abth. V von E. Fischer. L.eip-

zig (Kummer) 1896.

Die 5. Abtheilung der Pilze umfasst die Tuberaceen und Hemiasceen. Der

Schwerpunkt der Bearbeitung liegt, da die Formen bereits durch Hesse gut be-

kannt sind, in der Aufdeckung der Verwandtschaftsverhältnisse der Gattungen

unter sich und mit anderen Pilzgruppen. Es würde zu weit führen, hier näher

auf diese Verhältnisse einzugehen. Das Einleitungscapitel bespricht diese Dinge

ausführlich. Die Eintheilung der Ordnung ist folgende: 1. Eutuberineen mit

der Familie Eutuberaceen (Genea, Hydnotrya, Stephensia, Pachyphloeus, Tuber);

2. Balsamieen mit der Familie Balsamiaceen (Balsamia); 3. Elaphomycetineen

mit den Familien Terfeziaceen (Hydnobolites, Choiromyces, Terfezia, Picoa),

Elaphomycetaceen (Elaphomyces), Onygenaceen (Önygena).

Die Hemiasci zerfallen in Exohemiasci mit den Familien Ascoideaceen

(Ascoidea) und Protomycetaceen (Protomyces) und in Carpohemiasci mit den

Monascaceen (Monascus, Endogone).

Neu ist Onygena arietina.

Tichomirow, W. Die kaukasische Truffel: Terfezia. transcaucasica

W. Tichom. und die Verfälschung der französischen Handelstrüffel

in Moskau. (Pharmaceut. Zeit. für Russland. 1896.) c. tab. 2.

(139)

Wegelin, H. Beitrag zur l’yrenomycetenflora der Schweiz. (Mittheil.

der Thurgauer Naturf. Ges. Hft. XII. 1896.) c. tab. 2. N. A.

Woronin, M. und Nawaschin, $. Sclerotinia heteroica. Schluss. (Ztschr.

f. Pflanzenkr. 1896. p. 199.) c. tab.

Vergl. p. (115). mE

Arnold, F. Lichenologische Fragmente. (Oesterr. Botan. Zeitschr.

1896. p. 128, 176, 213, 245, 286, 326, 359.) c. tab.

Bearbeitung der Sammlungen Waghorne’s und anderer aus Labrador und

Neu-Fundland.

Neu ist Biatora exemptilis.

Hasse, H. E. Lichens of the Vicinity of Los Angeles IV. (Erythea

1896. p. 150.)

(The Botan. Gaz. 1896. p. 333.)

Lecidea virginiensis Calk. et Nyl., L. Nuttallii Calk. et Nyl., Arthonia

aleuromela Nyl., Lecanora deplanans Nyl.

Müller, J. Thelotremeae et Graphideae novae. (Journ. of the Linn.

Soc. London. XXX. 1896. p. 451.)

annulatum, T. praestans, T. schizostomum, Tremotylium Sprucei, Platygrapha

inferior, P. flexuosa, P. multilocularis, Opegrapha fertilis, O. palmicola, O. ulcerata,

O. angulosa, Graphis turgidula, G. Nlavicans, G. gomphospora, G. lecanorina,

Graphina tuberculifera, G. pachypleura, G. crassa, G. rhabdocarpa, G. alba,

Phaeographis tremulans, P. medusuliza, Phaeographina limbata, P. flexuosa,

Arthothelium ferax, Chiodecton violaceum, Sarcographa aurantiaca, Medusulina

microcarpa.

Zahlbruckner, A. Lichenes Mooreani. (Ann. des K. K, Naturhist.

Hofmus. Wien. XI. 1896. p. 188.)

Die vom Verf. bearbeiteten Flechten wurden von Moore in Australien ge-

sammelt. Neu sind Usnea intercalaris Krplh. var. vitiensis, Sticta Mooreana,

Parmelia subconspersa Nyl. var. eradicata und Parmelia stramineo-nitens.

Campanini, F. La resistenza dei blastomiceti agli agenti fisico-

chimici. (Policlinico 1896. 1. Juni.)

Fermi, Cl. e Pomponi E. Ricerche biologiche sui Saccaromiceti ed

Oidi. (Centralbl. f. Bact. u. Par. 2. Abth. II. 1896. p. 574.)

Horn, Margaretha E. C. The Organs of attachment in Botrytis

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Prior, EE Ueber den Nachweis des Zuckers in vergorenen Würzen

und dem unvergärbaren Würzerest der Hefen Saaz, Frohberg und

Logos. (Centralbl. f, Bact. u. Par, 2. Abth, II. 1896. p. 569.)

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Ed Sn 03 SE un Se 0 tal ei u una rate Da ie Fr

(140)

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Ritthausen, H. und Baumann. Ueber Zerstörung von Fett durch

Schimmelpilze. (Die landwirthschaftl. Versuchsstat. XLVII. 1896,

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Schukow, J. Ueber den Säureverbrauch der Hefen. (Centralbl. f.

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Seiter, 0. Studien über die Abstammung der Saccharomyceten und

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denen Nährlösungen. Diss. Leipzig 1896.

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von Vaccinium Myrtillus. (Zeitschr. f. Pflanzenkr. 1896. p. 198.)

Wili, H. Einige Beobachtungen über die Lebensdauer getrockneter

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Williams, Th. A. Experiments with potato scab. (South Dakota Agr.

Coll. and Exp. Stat. Brookings n. XLVIII. 1896.) c. fig.

VI. Moose.

Amann, J. Une excursion bryologique dans la Haute-Engadine.

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Bomansson, J. 0. et Brotherus, V. F. Herbarium Musei Fennici ed. II.

Musci. Helsingfors 1894.

Aufgeführt sind die im finnischen Museum aufbewahrten finnischen Moose.

In praktischer Weise wird, um die geographische Verbreitung zu zeigen, für

jede Art ein schematisches Tableau der finnischen Provinzen gegeben, in das

diejenigen Provinzen eingetragen sind, in denen das Moos vorkommt.

Brizi, U. Saggio monografico del genere Rhynchostegium. (Malpighia

1896. p. 227, 437.) c. tab.

Nach einer kurzen allgemeinen Einleitung giebt Verf. eine Bestimmungs-

tabelle der Arten, die sich auch auf die Varietäten erstreckt. In der Mono-

graphie selbst wird die Diagnose gegeben und werden ausführliche Standorts-

"angaben für Italien gemacht. Die Eintheilung ist folgende: Subgen. I. Eurhyn-

chostegium: R. rusciforme mit 8 Varietäten, R. confertum mit 3 Varietäten,

R. megapolitanum mit 2 Var., R. rotundifolium, R. murale mit 3 Var., R. ortho-

phyllum, R. algirianum mit 3 Var., R. demissum, R. depressum, R. Welwitschii;

Subgen. II. Eurhynchium: R. striatum mit 3 Var., R. meridionale, R. striatulum,

R. circinnatum mit 4 Var., R. strigosum, R. diversifolium, R. myosuroides,

(141)

R. praelongum mit 4 Var., R. Stokesii, R. speciosum, R. piliferum, R. romanum

n. sp., R. pumilum, R. Pirottae n. sp., R. crassinervium, R. Teesdalii, R. curvi-

setum, R. litoreum.

Debat, L. Note sur une nouvelle maniere de considerer l’espece en

bryologie. (Ann. de la Soc. Botan. de Lyon XX. 1895. p. 49.)

Dismier, G. Contribution: A la flore bryologique des environs de

Paris. II. (Bull. Soc. Botan. de France 1896. p. 369.)

Matouschek, F. Bryologisch-floristische Beiträge aus Böhmen. (Mittheil.

a. d. Ver. der Naturfreunde in Reichenberg. XXVIl. 1876. p. 17.)

78 Arten aufgezählt.

Rabenhorst’s Kryptogamenflora. Moose von G. Limpricht. Lief. 26,

27. 28. Leipzig (Kummer) 1896.

Behandelt wird der Schluss von Anomodon, ferner Pterogonium. Pterigy-

nandrum, Lescuraea, Ptychodium, Pseudoleskea, Heterocladium, Thuidium.

Damit schliesst der 2. Band der Moose. Der 3. Band beginnt mit den Hypnaccen

und behandelt in Lief. 27 und 28 folgende Gattungen: Platygyrium, Pylaisia,

Orthothecium, Cylindrothecium, Climacium, Isothecium, Homalothecium, Campto-

thecium und Brachythecium.

Neu sind Ptychodium Pfundtneri, P. decipiens, P, oligocladum, P. affıne,

Thuidium pseudo-tamarisci, Brachythecium tromsoeense Kaurin.

Rodegher, EE Elenco delle Fpatiche della provincia di Bergamo,

(Nuov. Giorn. Bot. Ital. 1896. p. 423.)

Simmens, H. G. Fontinalis antipyretica L. 7. monensis Card. et

Simm. n. v. (Bot. Not. 1896. p. 222.)

Underwood, L. M. The genus Cephalozia in North Amerika. (Bull.

Torrey Bot. Cl. 1896. p. 381.)

Es sind 14 Arten aus Nordamerika bekannt, wozu noch 2 zweifelhafte

kommen.

Zelenetzky, N. Matcriaux pour l’Etude de la flore bryologique de la

Crimde. (Bull. de l’Herb. Boissier 1896. p. 603.)

38 Arten von Laub- und Lebermoosen genannt.

VII. Pteridophyten.

Arnoldi, W. Die Entwickelung des weiblichen Vorkeims bei den

heterosporen Lycopodiaceen. (Bot. Zeit. 1896. p. 159.) c. tab.

Untersucht werden die weiblichen Vorkeime von Isoetes Malinverniana

und Selaginella cuspidata var. elongata.

Atkinson, G. F. The relations between the sterile and fertile leaves

of dimorphic ferns. (Linnean Fern Bull. IV. 1896. p. 33.) c. fig.

Baldacci, A. Rivista della collezione botanica fatta nel 1894 in AI-

bania. (Bull. de l’Herb. Boissier 1896. p. 609.)

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(142)

Bommer, J. E. ct Christ, H. Filices novae. (Bull. de l’Herb. Boiss.

1896. p. 657.)

Gleichenia retroflexa Bomm., Hymenophyllum Durandi Christ, Pteris mollis

Christ, Asplenium ceratolepis Christ, Aspidium prominulum Christ, Polypodium

eyclocolpon Christ, P. flagellare Christ, P, costaricense Christ, P. thyssanolepis

A. Br. var. bipinnatifidum Christ, P. myriolepis Christ, P. rosulatum Christ, As-

plenium crenato-serratum Bomm., A, Laurentii Bomm. Ausser den beiden letzten,

am Congo heimischen Arten, stammen alle übrigen aus Costarica.

Brebner, G. On the mucilage-canals of the Marattiaceae. (Journ. of

the Linn. Soc. London XXX. 1896. p. 444.) c. tab.

Christ, H. Filices Faurieanae. (Bull. de l’'Herb. Boiss. 1896. p. 664.)

Die Sammlung stammt aus Japan. Neu sind: Trichomanes acutum Makino,

Lomaria Fauriei Christ, Athyrium pterorachis Christ, Nephrodium Fauriei Christ,

Vittaria lanceolata Christ.

Dodge, R. How I found Dryopteris simulata. (Linnean Fern Bull, IV.

1896. p. 35.) c, tab.

Harz, K. Weitere Beiträge zur Flora Bambergs und des nördlichen

fränkischen Jura. (Abhandl. der Naturhist. Ges. zu Nürnberg X.

1895. Nürnberg 1896. p. 141.)

Ein Farn genannt.

Makino, T. Review of some species of Japanese Ferns. (The Tokyo

Botan. Magaz. 1896. Pt. I. p. 148, 177). Japan.

— Mr. H. Kuroiwa’s Collections of Liukiu Plants. (The Tokyo Bot.

Magaz. 1896. Pt. I. p. 220.) Japan. (l. c. Pt. I. p. 55.)

Farne genannt.

Meehan, T. Aspidium Goldianum. (Meehan’'s Monthly VI. 1896.

pP. 122.) c. tab,

Paulin, A. Die Bärlappgewächse Krains. (Mittheil. des Musealver.

für Krain VIII. 1896. Laibach p. 126.)

Beschreibung der in Krain sich findenden Lycopodinae. In der Einleitung

sind auch die fossilen Formen berücksichtigt.

Pirotta, R. Prima aggiunta alla florula dello Scioa e dell’ Harar.

(Ann. del R. Istit. Bot. di Roma. VI. 1896. p. 155.)

Farne genannt,

Reed, M. Ferns of Wyandotte County. (Trans. of the Kansas Ac.

of Sc. XIV. 1896. p. 150.)

Rydberg, P. A. Flora of the Black Hills of South Dakota. (Contrib.

from the U. S. Nat. Herbar. III. 1896. p. 463.) c. tab. 3,

Waters, C. E. Dryopteris simulata in Maryland. (Linnean Fern

Bull. IV. 1896. p. 38.)

Zeiller, R. Etude sur quelgues plantes fossiles en particulier

Vertebraria et Glossopteris, des environs de Johannesburg, Trans-

vaal. (Bull. Soc. geol. de France. 3 ser. XXIV. 1896. p. 349.)

c. tab. 4.

| Sammlungen.

Baenitz, C. Herbarium Europaeum. Lief. 95 — 101.

In dieser rühmlichst bekannten Sammlung werden auch viele Kryptogamen

ausgegeben, die zum Theil einzeln käuflich sind. So befinden sich in den an-

gegebenen Lieferungen ausser Pteridophyten auch Charen, Pilze und Laubmoose,

Roumeguere, C. Fungi exsiccati praecipue Gallici. LXXI. cent. (Rev.

myc. 1896. p. 145.)

Ausser einigen in der Rev. myc. 1896 beschriebenen Arten sind an Neu-

heiten hauptsächlich Substratformen zu erwähnen.

Krieger, W. Fungi saxonici exsiccati. Diagnosen der bisher noch

nicht veröffentlichten Arten.

180. Calosphaeria Kriegeriana Niessl in litt. n. sp.

Perithecia irregulariter dense stipata mox circinantia mox inor.linata in

cortice interiore nidulantia, rarius liberata, soros oblongos, per peridermium

vix elevatum, fissum erumpentes formantia, minuta (circa !/; mm diam,) atra,

glabra, coriacea, subovoidea in collum attenuata, crassum brevem peritheciorum

diametro vix aequantem, cylindricum adscendente curvatum:; asci cuneiformi-

clavati apice obtusissimi, truncati, octospori, 50—70 Mik. longi, 9—12 Mik. lati;

sporae in ascorum superiore parte farctae cylindricae obtusae, curvulae,

unicellulares, subhyalinae, 9—12 Mik. longae, 2—3 Mik. latae. Pseudoparaphyses

longissimae, latae, septatac.

Wegen der eingesenkten Perithecien habituell manchen Valseen ähnlich,

allein die charakteristischen langen Pseudopharaphysen sind von Calosphaeria.

Calosph. minima, auch auf Prun. domestica und spinosa vorkommend, hat kaum

"halb so grosse Schläuche und Sporen, und verästelte Schlauchstiele. Näher

steht sie der Calosph. dryina, welche jedoch ganz oberflächliche Perithecien

besitzt. G. v. Niessl (in litt 27.4. 1886).

Auf dürren Aesten von Prunus spinosa L. in den Steinbrüchen bei Halbe-

stadt b. Königstein; sehr selten.

Februar 1886. leg. W. Krieger.

371. Podospora arachnoidea Niessl in litt.

Perithecia sparsa vel gregaria, semiimmersa, ovoidea in collum conicum

crassum attenuata 0,6—0,8 mm diam., villo arachnoideo albido tecta, postremo

subnuda atra rugulosa; asci elongate cylindracei, pedicellati, varıa longitudine

150—200 mmm Igi., 15—18 mmm Iti., octospori, paraphysibus tubulosis articulatis;

sporae laxe distichis, rhomboideo -lanceolatae, utrinque obtuse retusae fusco-

nigrae, 16—18 mmm Igae., S—10 mmm Itae., basi appendiculo hyalino sub-

cylindrico, plerumque curvato sporae duplo longiore, apice appendiculo sub-

filiformi, varia longitudine mox evanescente.

Die Art steht jedenfalls, sowohl in Bezug auf die Entwickelungsgeschichte

der Sporen als auch morphologisch der Podospora coprophila nahe; allein von

den mir bekannten Formen derselben lässt sie sich habituell und durch die

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(144)

Sporen sehr gut unterscheiden. Die Bekleidung der Perithecien, aus einem fest

anliegenden spinnwebartigen dünnen Filze bestehend, ist ganz anders als bei-

P. coprophila. Sie ist ziemlich beständig und erst die ganz überreifen Perithecien

sind fast kahl. Die Form der Sporen, welche durch die Schweifung an beiden

Enden, namentlich aber am Scheitel, ins lanzettliche geht, ist auch eine ganz

andere, als bei den bekannten Arten der Gruppe Coprophila.

G. v. Niessl.

Diese schöne Art sammelte ich auf Dünger, womit verschiedene grössere

Pflanzen im Palmenhause des botan. Gartens in Dresden gedüngt worden waren.

26. Mai 1888. leg. W. Krieger.

546. Physoderma Schröteri Krieger n. sp.

Der Pilz tritt auf den Blättern und deren Scheiden in zweierlei Gestalt

auf. Entweder bildet er schwarze rundliche Flecken mit einem Durchmesser

von '/; bis 1 mm, oder er zeigt sich als schwarze Linien, die bis 2 mm lang

sind. Die kugeligen oder länglich-runden Dauersporangien finden sich zu 1—4

in den Parenchymzellen. Sie haben eine hellgelbe bis bräunliche Farbe und

besitzen eine dicke braune Membran. Ihr Durchmesser beträgt 23— 36 mmm,

Auf Scirpus maritimus L. an einer Lache bei Königstein; sehr selten.

2. Juli 1889, leg. W. Krieger.

594, Physoderma Allii Krieger n. sp.

Schwielen flach, länglich, 1'/;—5 mm lang, 1—2 mm breit, von braunrother

Farbe. Dauersporangien kugelig oder länglich-rund, gelbbraun, 18—28 mmm im

Durchmesser.

Der Pilz findet sich an den Blättern, Blüthenschäften und Blüthenscheiden

von Allium Schoenoprasum L. am Elbufer bei Königstein; schr selten,

4. Juni 1890. leg. W. Krieger.

1081. Physoderma Calami Krieger n. sp.

Flecken braun, rundlich oder länglich, '/J;,—1'/); mm im Durchmesser, auf

den lebenden Blättern gar nicht, auf den getrockneten nur wenig schwielenartig

hervorragend.

Dauersporangien zu mehreren in den Blattzellen, bräunlich, kugelig oder

etwas länglich, 15—22 « im Durchmesser.

Auf Acorus Calamus L. in den Teichen auf der Ebenheit bei Königstein;

schr selten.

Juli 1891, Sept. 1891, 92 u. 9. leg. W. Krieger.

1082, Physoderma Magnusiana Krieger n. sp.

Flecken !/,;—1!/;, mm im Durchmesser, auf den Blattstielen längliche, flache,

auf der Blattfläche meist rundliche, oft knötchenartig hervorragende, braune

Schwielen bildend.

Dauersporangien braun, kugelig oder länglich-rund, 20—34 u im Durch-

messer. \

Auf Nasturtium amphibium R. Br, in der Elblache b. Strand b, Königstein;

sehr selten.

19. Sept. 1895. leg. W. Krieger.

1101. Protomyces Bellidis Krieger n. sp.

Flecken weissgelb oder fast ockerfarbig, rundlich, '/;—1!/, mm breit, einzeln

oder herdenweise, gar nicht oder nur wenig schwielenartig hervorragend.

Dauersporen farblos oder schwach gelblich, kugelig oder länglich -rund,

30—45 « breit, Epispor glatt, 1,5—3 u dick.

(145)

In den Blättern (nur einmal in einem Blüthenschaft) von Bellis perennis L.

bei Königstein; sehr selten. — Der Pilz ist schwer zu finden, jedes Blatt

mikroskopisch geprüft.

April — Juni 1895, leg. W. Krieger.

1102. Eniyloma Bellidis Krieger n. sp. Conidienform.

Flecken weisslich, rundlich, 1—3 mm breit, oft zusammenfliessend, mitunter

die ganze Blattfläche einnehmend. Conidienräschen weiss, sehr klein, auf der

Unter- wie auf der Oberseite der Blätter. Conidien nadelförmig, etwas gebogen,

farblos, 22—40 u lang, 1,5 « dick. — Die hier mitgetheilten Expl. wurden im

Sept. 1894 gesammelt. Dauersporen fand ich nur in wenigen Blättern, trotzdem

ich viele mikroskopisch untersuchte. Ich vermuthete deshalb, dass die Dauer-

sporen erst im folgenden Frühlinge zur reicheren Entwickelung kommen würden.

Meine Annahme war richtig; denn schon am 16. April 1895 fand ich am Fund-

orte der Conidien in den Blättern, die im Herbste vorher die Conidien getragen

hatten, die Dauersporen in schönster Entwickelung.

Auf Bellis perennis L. im Bielathale bei Königstein; sehr selten.

Sept. 1894. leg. W. Krieger.

1103. Entyloma Bellidis Krieger n. sp. Dauersporenform.

Flecken weiss oder gelblich, rundlich, !/;—2 mm breit. Sporen kugelig,

farblos oder gelblich, 9—14 u breit, Epispor 1,5 « dick.

In den Dauersporen stimmt vorliegende Art mit E. Calendulae (Fung. sax.

No. 3, 102, 901, 951) überein. Nur die hier vorher auftretende Conidienform

veranlasst mich, diesen Pilz als selbständige Art aufzustellen. — Jedes Pflänzchen

oder Blättchen ist mikroskopisch geprüft.

Auf Bellis perennis L. bei Königstein; schr selten.

a) Im Bielathale am Fundorte der Conidien, 16. April 1895.

b) An verschiedenen Orten bei Königstein, April— Juni 1895.

leg. W. Krieger.

1104, Entyloma Brefeldi Krieger n. sp.

Sporen farblos oder schwach gelblich, kugelig, 10,5 —15 « dick; Epispor

glatt, 1,5 « dick. Flecken, wie sie sonst die Species dieser Gattung besitzen

und wodurch sie sich gleich äusserlich dem Auge kenntlich machen, kommen

bei dieser Art nicht vor. Die Sporen finden sich in grosser Menge in langen

Streifen von bleicher Farbe in den Blättern; auch die bleichgelben Blattscheiden

sind von den Sporen erfüllt. Nur durch die bleiche Farbe fallen die vom Pilze be-

fallenen Pflanzen unter den gesunden auf; ein anderes Kennzeichen giebt es nicht.

In Phalaris arundinacea L. in einem Wiesengraben bei der Waltersdorfer

Mühle in der Sächs. Schweiz; sehr selten.

25. Juni 1892, 27. Mai u. 13. Juni 1894. ‚ leg. W. Krieger.

Rehm. Ascomycetes exsiccati. Fasc. 24. 1896.

Der vorliegende Fascikel verdankt seine Entstehung den Einsendungen

zahlreicher Ascomyceten -Forscher. In erster Linie stehen die herrlichen Bei-

träge von Herrn Prof. Dr. v. Lagerheim, theils aus dem arctischen Norwegen,

zumeist noch aus Ecuador, wodurch der Sammlung grosser Werth verliehen ist

und ich zu grösstem Dank verpflichtet bin. Zahlreiche Beiträge lieferte ins-

besondere Herr Sydow, dann die Herren Prof. Dr. Magnus, Dr. Shear, Krieger,

Dr, Arnold, Starbäck, Bresadola, Staritz, Reinicke, Eliasson, Hennings, Pazschke.

Ihnen Allen gebührt mein bester Dank. Ob aber die Sammlung fortgesetzt

werden kann, wird sich zeigen, da nur freundliche Unterstützung durch Beiträge

Anderer dies ermöglichen wird.

Regensburg, 1. Oktober 1896. Dr. Rehm.

Hedwigia Ba, XXXV, 1890. 12

(146)

. Morchella rimosipes DC.

. Otidea abietina Fuckel.

Otidea cochleata (L.) Fuckel.

Lachnea cinerella Rehm.

. Pitya Cupressi (Batsch).

. Ciboria luteovirescens (Rob.) Sacc.

7. Helotium carpinicolum Rehm nov. spec. „Apothecia gregaria,

brevissime stipitata, primitus clausa, dein disciformiter aperta, plana, denique

subconvexa, rotunda, tenuissime marginata, lacteo Nlavidula, extus glabra, sub-

hyalina, subprosenchymatice contexta, 1—3 mm lat., sicca vix corrugata, flava.

Asci clavati, apice rotundati et incrassati, 60—90/12, 8spori. Sporidia subfusi-

formia, subobtusa, recta vel subcurvata, 1 cellularia, utraque apice nucleolo

oleoso, hyalina, 12—15/4—5, disticha. Paraphyses filiformes, hyalinae, 3 « lat.

Ad folia putrida Carpini Betuli prope Berolinum. leg, Sydow.“ (Durch Farbe

der flach ausgebreiteten, sich nicht einrollenden Apothecien, dann durch die

mit 2 kleinen Oeltropfen versehenen Sporen von den verwandten Arten ver-

schieden.) _

8. Belonium sulfureo-tinctum Rehm nov. spec. „Apothecia plerumque

gregaria, sessilia, primitus clausa, globosa, dein disco plano, tenuiter marginato,

lavidulo aperta, extus glabra, plus minusve subsulfurea, prosenchymatice con-

texta, sicca corrugata, 0,2—0,5 mm lat. Asci clavati, apice rotundati,

45—50/6—8 8spori. Sporidia bacillaria, recta vel subcurvata, 2 cellularia, hya-

lina, 14—18/2, disticha. Paraphyses paucae, filiformes, hyalinae, 3 « lat. Ad

folia putrida quercina prope Berolinum. leg. Sydow.“

9, Pezizella Mikaniae Rehm. nov. spec. „Apothecia sessilia, sparsa,

interdum gregaria, subglobosa, disco plano, carneo, ex fibris rectis, hyalinis vel

subflavidulis, c. 1,5 « lat. 200—300 u long. laxe prosenchymatice contexta

succinea, c. 200 u lat. Asci clavati, apice rotundati, 35—40/6—7, 8spori. Spo-

ridia subeylindracea, recta, obtusa, 1 cellularia, interdum nucleolis instructa,

hyalina, 5—6/1,5, 2—3sticha. Paraphyses filiformes, hyalinae, laxae, 5—6/2. Ad

paginam inferiorem foliorum vivorum Mikaniae Ecuador, Prov. Pichincha, San

Jorge. 7.1892. leg. Lagerheim.“

10, Pezizella minor (Rehm) Starbäck. (Vet. Ak. Handl. 21. III. p. 31.

tab. I. f. 20 a—c.) Apothecia gregaria, sessilia, disco demum plano, tenuissime

marginato, hyphis sparsis hyalinis marginalibus instructa, hyalinella, extus glabra,

sicca cinerella, haud corrugata, 0,2—0,25 mm diam. Asci clavati, subcurvati,

apice rotundati, 25—30/5, 4—8spori. Sporidia fusiformia, recta vel subcurvata,

1 cellularia, hyalina, 8—12/2. Paraphyses paucae, filiformes. Unterscheidet sich

von Pezizella punctiformis (Grev.) durch heerdenförmig gedrängte, fast farblose

Apothecien und wurde immer auf Acer-Blättern bei Berlin und Upsala gefunden.

Pezizella puberula (Lasch) in Thümen, Fung. austr. 930 wird hierher gehören.

Cfr. Rehm, Discom. p. 665.

11. Pezizella albonivea Rehm.

12. Pezizella puberula (Lasch.). Diese Art erscheint noch sehr fraglich.

13. Dasyscypha calyciformis (Willd.) Rehm.

14. Pyrenopeziza Lychnidis Sacc. Synon.: Pyrenopeziza sphacrioides

(Desm.) Rehm, Discom. p. 614. Da Pyrenopeziza sphaerioides (Pers.) auf Salix-

Blättern die Priorität besitzt, musste der Name geändert werden. Cfr. Rehm,

Discom. p. 1251.

15. Patellaria proxima B. et Br. Cfr. Rehm, Discom. p. 331. Exsicc.:

Rabh.- Winter, Fung. eur. 3769 (sub Propolidium atrocyanum), Phillips, Elvell,

brit. 147.

16. Patellaria Carestiae De Not.

17. Ascophanus rosellus Starbäck nov. spec. Ad finum vaccinum.

Uplandia, Luccia, leg. Starbäck.

18. Gloeopeziza Zukalii Rehm nov. spec. Apothecia gregaria, sub-

plana, sessilia, dilute roseola, excipulo plane carentia, intus hyalina, subgelatinosa,

0,2—0,8 m lat. Asci cylindracei, apice rotundati, saepe subcurvati, 75/9, 8 spori.

Sporidia elliptica vel ovata, glabra, 1cellularia, nucleo oleoso 1 magno centrali

praedita, hyalina, 9—11/5, 1sticha. Paraphyses filiformes, apice interdum hamu-

latae, hyalinae, 1 « lat. Parasitica supra Algos ad fossam sylvestrem prope

Monacum Bavariae leg. Dr. Arnold. (Unterscheidet sich durch die grösseren

Apothecien, Form der Schläuche und nicht keulig verbreiterte Paraphysen von

Gloeopeziza Rehmii Zukal).

19. Ascobolus globularis Roll. (Bull. soc. myc. IV. p. 57. tab. XV. f. 1.)

20. Biatorella campestris (Fries) Rehm.

>21. Exoascus Tosquinetii (Westdp.) Sadeb. Synon. Ascomyces Tos-

quinetii Westdp., Taphrina Tosquinetii Magnus non — Rehm Ascom. 217a, b

(diese — Exoascus flavus Sadeb. — Taphrina Sadebeckii Johans. = Taphrina

flava Magnus). Exsicc.: Rabh.-Winter, f. cur. 3038, Krieger, f. sax. 123.

22, Exoascus carneus (Johans.). Lagerheim in litt. Dieser schreibt:

„Nach Johanson geht das Mycel ganz und gar in der Bildung der Asken auf.

Da also kein steriles Mycel zurückbleibt, so würde diese Art in die Gattung

Exoascus (nach neuester Begrenzung von Sadebeck) zu stellen sein. Die An-

gaben von Johanson in Betreff der Asken-Bildung werden jedoch von Sadebeck

berichtigt, indem er fand, dass man wie bei T. Sadebeckii, bullata etc. zwischen

fertilen Hyphen und sterilem Mycel unterscheiden kann. Nach Sadebeck würde es

sich also um eine Art der Gattung Taphrina handeln. Ich habe lebende Exemplare

des Pilzes untersucht und nur obige Angaben Johanson’s bestätigen können,

weshalb ich denselben zu Exoascus stelle, obwohl er keine Hexenbesen bildet.“

23. Mytilidion decipiens (Karst.) f£. Conorum Sacc.

24. Hysterostomella andina Patouill.

25. Lophiostoma insidiosum (Desm.) Cet. et DN. Cfr. Berlese, Icon.

fung. p. 12 tab. VII f. 6, Ellis et Everh., N. am. pyrenom. p. 232. f. Lactucae.

26, Mazzantia Napelli (Ces.) Sacc. Exsicc. Cavara, Fung. Longob. II 89,

Linhart, Fung. hung. 473, Rabenh., Fung. eur. 1272, 2133, Sacc., Myc. Ven. 1370.

27. Valsa germanica Nke. f. cryptosphaerioides Rehm. (discus und

spermogonium fehlen, dadurch entsteht der Eindruck einer Cryptosphaeria). An

dürren Aesten von Salix alba bei Berlin, leg. Sydow.

28. Eutypella scoparia (Schwein.). Ellis, N. am. Pyrenom. p.495. Exsicc.

Ellis et Everh., N. am. fungi 2517.

29, Melanconis tiliacea Ellis (N. am. pyren. p. 524). Exsicc. Ellis et

Everh., N. am. fung. 2521, Shear, N. Y. fungi 174.

30, Calosphaeria annexa Nke. Exsicc.? Fuckel, Fung. rhen. 2033,

Krieger, Fung. sax. 968.

31. Diaporthe fasciculata Nke. Exsicc. Allescher et Schnabl, Fung.

bav. 444a, b, Krieger, Fung. sax. 1075, Rabh.- Winter-Pazschke 4062, Sydow,

Myc. march. 299.

32. Diaporthe aristata (Fries) Karst.

33. Diaporthe denigrata Winter (Pyrenom, p. 604). (Perithecien dem

Holz eingewachsen, schwarzer Saum fehlend. Schläuche spindelförmig, 36—40/8.

ba Au BL ne un u ne zu en EL u ua en u Bi >

(148)

8sporig. Sporen spindelförmig, gerade oder etwas gebogen, 2zellig, meist mit

je 2 kleinen Oeltröpfchen, 12/4, 2reihig). An dürren Stengeln von Peucedanum

Oreoselinum bei Berlin, leg. Sydow. Hierher gehören als Exsicc.: Kunze, Fung.

sel. 355 auf Angelica sylv. (? 354 auf Daucus), Rabh.-Winter, Fung, eur, 3751 auf

Angelica, Sydow, Myc. march. 1649 auf Heracleum Sphondylium, sämmtlich ohne

Grenzsaum. Dagegen hat Thümen, Myc. un. 1751 und Winter, Fung. eur. 3556, beide

auf Angelica sylv., deutlichen Saum. Letzteres ist auch der Fall bei Diaporthe

Faberi Kunze in Kunze, Fung. sel. 266, Rabenh., Winter, Fung. eur, 3155, beide

auf Laserpitium latifolium. Diaporthe Berkeleyi (Desm.) Nke,, Exsicc.

Sacc., Myc. Ven. 1345 auf Ferulago galbanifera hat ebenfalls den Saum, cfr. Nke.,

Pyren, p. 273, auf Angelica sylv., ferner Diaporthe inquilina (Wallr.) Nke.,

Pyren. p. 272 auf Heracleum Sphondylium, Exsicc. Plowright, Sphaer. brit. I. 82,

Cooke, Fung. brit. II. 491 auf Angelica. Dagegen wird ein Exemplar meiner

Sammlung von Diap. inquilina an Laserpitium latifolium, gesammelt von T.Kunze,

zu Diaporthe Faberi gehören. Uebrigens stehen sämmtliche Arten einander

äusserst nahe und dürfte nur D. inquilina durch dickkrustige, fleckige Lager

verschieden sein.

34. Diaporthe Arctii(Lasch) var. Artemisiae Rehm. Schwarze Saum-

linie fehlend. Schläuche spindelförmig, 50/9, 8sporig. Sporen spindelförmig,

spitz, meist gerade, zuletzt 4zellig, 12—14 (—17)[3—3,5 (—5). Exsicc. Rabh.-

Winter-Pazschke. Fung. eur. 39, 59. An dürren Stengeln von Artemisia vulgaris

bei Berlin, leg. Sydow. Exsicc. Ellis, N. am. 1194 (sub Diaporthe incrustans

Nke.?) auf Erigeron canadense, ermangelt auch des Saumes, fernerhin Thümen,

Mycoth. un. 1856 sub Diaporthe orthoceras in caulibus aridis Arthemisiae vul-

garis in N. Am., hat aber elliptische, nicht eingeschnürte, 9—10 u lange Sporen.

Dagegen besitzt Rabh.-Winter, Fung. eur. 3156 sub Diaporthe orthoceras, an

dürren Stengeln von Arthemisia Absinthium, von Niessl gesammelt, starke schwarze

Saumlinie mit stellenweise schwarzer Färbung der Holzschicht und wird deshalb

verschieden sein,

35. Diaporthe orthoceras (Fries) f. Centaureae. Besitzt keine Saum-

linie, während Ellis et Everh., N. am. Pyrenom, p. 451 und Winter, Pyrenom.

p- 607 eine solche angeben.

36. Cordycep capitata (Holmskj.) Link. Exsicc. Rabh.-Winter-Pazschke

3957, Sydow, Myc. march. 279. Moug. et Nestl., Stirp. vog. 763 dürfte wegen

der in 15—18 «u lange, 3 « breite, cylindrische Stücke zerfallenden Sporen,

welche bei capitata 36/4,5, eher zu C. ophioglossoides gehören, während bei

Ravenel, Fung. am. 337 die Zellstücke 10—12/2,5 sind.

37. Polystigma nigroviride Rehm. nov. spec. Stromata hypophylla,

solitaria, late sessilia, rotunda, plus minusve hemisphaerica, sicca concaviuscula

vel plana, papillulis minimis exasperata, subviridula, dein nigra, intus nigrofusca,

mollia, 12—20 perithecia includentia, 0,5—1,5 mm diam. Asci cylindracei, apice

rotundati, c. 180/9, 8spori. Sporidia oblonga, obtusa, crasse tunicata, flavido-

hyalina, 1 cellularia, plerumque granulis oleosis repleta, 9—11/7, 1 sticha.

Stromatibus elapsis foliorum parenchyma lacunose flavidum relictum ibique

pagina superior folii flavide rotunde et subconvexe maculate 2—3 mm lat. In

foliis vivis Melastomatis. San Jorge, Prov. Pichincha, Ecuador. 7.1892. leg.

Lagerheim. Dieser schrieb mir: „Dürfte eine andere Art als P. Melastomatis

Pat. Bull. soc. myc. VII. p. 175 tab. XII. f. 4 sein, da Sporen und Nährpflanze

verschieden sind, ob aber ein echtes Polystigma?“ Patouillard sagt, dass bei

seiner Art die Stromata aus dem Blatt-Parenchym entspringen, die Schläuche

keulig, die Sporen eiförmig sind, was bei vorstehend beschriebener Art eben-

sowenig der Fall, als dass die radienförmig gereihten, verlängerten Zellen mit

- (149)

einem orangerothen Saft erfüllt sind. Phyllachora Melastomatis (Fries)

Sacc. Syll. II. p. 611 in foliis Melastomatum, Surinam: „ambitu radioso fibroso,

>» mm lat.“ hat nach Cooke: asci ampli, clavati. Sporidia ellipsoidea, medio

constricta, fusca, 26/10, gehört also zu Seynesia.

38. Pleospora maritima Rehm nov. spec. Perithecia gregaria, immersa,

glabra, papillula conoidea prominentia, globosa, 400 u lat. Asci oblongo-clavati,

sessiles, crassi, 180/45, 8spori. Sporidia oblonga, obtusa, medio vix constricta,

transverse 4—8, perpendicuvlatiter 2—3 septata, flavidula, 45—60/21— 25, disticha.

Paraphyses conglutinatae. Ad folia pristina Triglochinis maritimi prope Kaa-

fjord, Alton maris arctici Norvegici. 7./1895. leg. Lagerheim, Pleospora

Triglochinis Har. et Br. Cfr. Sacc. Syll. IX. p. 878, Berlese, Icon. Fung.

tab. XV. f. 3 ist durch bräunliche, quer 6fach, senkrecht 1fach getheilte,

30 -35/14—16 Sporen ganz verschieden. Pleospora islandica Johanson hat

nach Berlese, Icon. fung. p. 26 tab. 39 f. 2 viel schmälere, zugespitzte,

40—48/12-—14 Sporen.

39. Leptosphaerialejostega (Ellis) Elliasson Synon. Sphaeria lejostega

Ellis (Bull. Torr. Club 1881 p. 91), Metasphaeria lejostega Sacc. (Syll. Pyren. I.

p. 164), cfr. Ellis, N. am, Pyren. p. 383. Exsicc. Ellis, N. am f. 888. Perithecien

unter der Oberhaut eingewachsen, nicht hervorbrechend, Schläuche cylindrisch,

oben abgerundet, 150/8—9, 8sporig. Sporen elliptisch, stumpf, selten ei- oder

kegelförmig, gerade, 4zellig, an den Scheidewänden, bes. der mittleren manch-

mal etwas eingeschnürt, farblos, 12—15/7. Paraphysen ästig. Jod bläut den

Schlauchporus. An dürren Ranken von Rubus fruticosus bei Wenenborg in

Schweden. leg. Elliasson. Tavel hat auf Rubus bei Thun in der Schweiz den

völlig gleichen Pilz gesammelt. Berlese, Icon. Fung. p. 129 erachtet denselben

nach dem Explr. Ellis für synon. mit der auf Salix wachsenden: Metasphae-

ria corticola (Fuckel) und Metasphaeria cinerea Fuckel, Exsicc. Fuckel,

Fung. rhen. 2044, Synon. Leptosphaeria cinerea Winter (Pilze II. p. 474), was

ich für nicht richtig erachte. Dagegen ist die Art vorsichtig von Sphaeru-

lina intermixta (B. et Br.), Synon.: Metasphaeria sepincola (Fries) Sacc.,

Leptosphaeria sepincola Winter (Pyrenomyc. p. 473 p. p.) zu trennen. Cir.

Starbäck. (Bot. Not. 1890 p. 116.)

40. Leptosphaeria consociata Rehm nov. spec. Perithecia paginae

superiori foliorum flavide maculatae immersa, dein papilla brevissima prorum-

pentia, globosa, singularia, vel bina, rarissime tria consociata, nigra, glabra,

0,3 mm lat. Asci elliptici, sessiles, 90—100/21, 8spori. Sporidia fusiformia, recta

vel subcurvata, dilute flavidula, 6 cellularia, ad septa non constricta, 30—36/6—7

disticha. Paraphyses filiformes, hyalinae, 3 « lat. Perithecium molle, viridi-

fuscum, parenchymaticum, Porus acorum J-+. Ad folia Chusqueae. San Jorge,

Prov. Pichincha, Ecuador. 7./1892. leg. Lagerheim. (Unterscheidet sich ins-

besondere durch die Jodreaction der Schläuche von allen übrigen Arten.)

41. Ophiobolus tenellus (Awd.) var. Geranii Karst. (Hedwigia 1884

p. 3.) Cfr. Sacc., Syll. IX. p. 928. Karsten |. c. sagt: „parum vel vix differt ab

Oph. tenello“. Exsicc. Sydow, Myc. march. 862 an Chelidonium wird zur

gleichen Art gehören, ebenso Ophiobolus Hesperidis Sacc. (Syll. II. p. 343),

Exsicc. Sacc., Myc. Ven. 74 in caulibus Hesperidis matronalis.

42. Gnomonia setacea (Pers.) f. Alni. Die fädigen Anhängsel der

Sporen erscheinen durchaus nicht immer vorhanden, auch Ellis, N. am, pyren.

p. 326 pl. 32 f. 9—10 und Winter, Pyrenom. p. 582 sagen nur, dass sie oft vor-

handen seien.

43. Lizonia Lagerheimii Rehm nov. spec. Perithecia aggregata in

pagina superiore, demum arescente et brunnescente foliorum primitus lineariter

Mai 3 hr Di ir a en kein a dh a an ed ne a

TR ic u Sr Ani a ir Se. ak ee

(150)

ad nervos, sessilia, glabra, sphaeroidea, nigra poro minutissimo pertusa, c. 250 u

lat. Perithecium molle, flavido fuscidulum, parenchymaticum. Asci elliptici vel

clavati, apice valde incrassati, late sessiles, 70—100/15—20, 4—8 spori, Sporidia

fusiformia, raro subclavata, recta, 2 cellularia, interdum medio subconstricta,

hyalina, 30—36/6—7, 2 sticha. Paraphyses ramosae, septatae. Ad folia Alche-

millae. Pichincha, Ecuador. 12.1889. leg. Prof. Lagerheim.

44. Meliola pseudanastomosans Rehm nov. spec. Maculae epiphyllae,

orbiculares, sparsae, 1—3 mm diam., nigrae, mycelium ex hyphis, rectis, subramosis,

fuscis, —6 u lat. septatis, hyphopodiis alternantibus, capitatis, retroflexis,

15—18/9—12 contextum. Perithecia 4—8 gregaria sessilia rugulosa, glabra, fusca,

250—280 « diam. Asci elliptici, teneri, c. 75—36 2—3 spori. Sporidia cylindracea,

utrinque rotundata, 5 cellularia, ad septa subconstricta, primitus hyalina, dein

fusca, 30—36/9—12. Ad folia Psoraleae. Ecuador, Prov. Pichincha, San Jorge.

leg. Prof, Lagerheim 7./1892. (Steht nach der Beschreibung der Meliola anasto-

mosans Gaill. bes. in Grösse und Sporenform sehr nahe, entbehrt aber der

Anhängsel an der Perithecien-Wand und der hyphopodies mucronndes. Rabh.-

Winter-Pazschke, f. eur. 3847 ist in meinem Exemplar leider unbrauchbar.)

45. Asteridium Chusqueae Rehm nov. spec. Mycelium hypophyllum,

plagulas sparsas orbiculares, radiantes 2—4 mm lat. nigrofuscas, ex hyphis ramosis,

septatis, fuscidulis, 3 « lat. contextas formans. Perithecia 2-6 conglomerata,

sessilia, glabra, mollia, parenchymatice contexta, fusca, 250 « diam. Asci pyri-

formes, crassi, apice elongati, 30—45/9—10, 8 spori. Sporidia subclavulata,

recta, ?—4 cellularia, in quaque cellula nucleum oleosum continentia albo-fusci-

dula, 7—12/2,5—3, disticha. Paraphyses desunt. Ad folia Chusqueae, Ecuador,

Prov. Pichincha, San Jorge. 7./1892. Prof. Lagerheim. (Siedelt sich an durch

Pilze geöffneten Stellen des Blattes an.)

46. Asterina solanicoloides Rehm spec. nov. Mycelium epiphyllum,

plagulas orbiculares, saepe confluentes, 2—5 mm lat., fuscidulas formans, ex

hyphis rectangulariter ramosis septatis, fuscis, c. 5 « er. cum hyphopodiis

alternantibus, 2 cellularibus, rectis vel subcapitatis, 6/3 contextum. Perithecia

sessilia, globosa, permulta, parenchymatice contexta, glabra vel interdum setis

singularibus, rectis, simplicibus, apice curvatis, subhyalinis, 60/4 obsessa, 150—200 u

diam, Asci subglobosi, crassi, 50—60/30—40, 8 spori. Sporidia oblonga vel sub-

ovata, 2 cellularia, medio valde constricta, primitus hyalina, demum subfusca,

20—25/9—12 Jodii ope asci valde coerulee tinguntur, Ad folia Solani. Ecuador,

Prov. Pichincha, San Jorge. 7.1892. Prof, Lagerheim. (Durch viel grössere

runde Mycelien von Ast. vagans Speg. mit 0,5—1 m breiten, unregelmässigen

Mycelien und langgestielten, kopfförmig gelappten Hyphopodien, 15/10 und kaum

eingeschnürten Sporen verschieden. Asterina solanicola B et C., Synon.; Dimero-

sporium solanicolum Speg. f. Guar. II. 45 mit länglichen, spindelförmigen, farb-

losen Sporen (cfr. Sacc. syll. I. p. 48) gehört vielleicht zu Ast. vagans. Cfr. Rehm

Ascom. 1120, Hedwigia 1895. p. 162. Asterina subreticulata Speg. hat keine

Hyphopodien.

47. Uncinula macrospora Peck. (Cfr. Ellis, N. am. pyren. p. 18.)

Exsicc. Ellis, n. am. f. 426, Thümen, Myc. am. 2053, Shear, N. Y. f. 143.

48. Uncinula Clintonii Peck. (Cfr. Ellis, n. am. pyren. p. 15.) Exsicc.

Ellis, n. am. f. 662, Rabh.-Winter-Pazschke, f. eur, 4051, Shear, N. Y. f. 142.

49. Erysiphe lamprocarpa (Wallr.) Lev. f. Plantaginis (Rabh.) Lev.

Exsicc. Fuckel, f, rhen. 653, Rabh., f. eur. 1048, 1523, Sydow, Myc. march. 656.

50. Eurotium insigne Winter. Exsicc. Krieger, f, sax. 1066, Rabh,,

P8ur..1732,

(151)

319b. Lophodermiumarundinaceumvar.alpinum Rehm. 724e.Rhy-

tisma salicinum (Pers.) Fr. 608c. Naevia pusilla (Libert).. 62b. Dasy-

scypha Willkommii Hartig. 603b. Sclerotinia Duriaeana (Tul.). 552b. Pli-

caria pustulata (Hedw.). 553c. Plicaria pustulata (Hedw.) f. pumila.

635b. Nectria Ribis (Tode) Oudem. Exsicc. Briosi et Cavara, f. paras.

216c. ic., Plowright, Sphaer. brit. III. 11. 433c. Cryptosphaeria populina

(Pers.) Sacc. 996b. Herpotrichia nigra Hartig. (Cfr. Sacc., Syll. f. IX.

p. 858.) Synon. sec. Berlese, Icon. fung. I. p. 105. tab. 103. f. 1. Enchno-

sphaeria nigra (Hartig) Berl., Enchnosphaeria pinetorum Sacc. (Michelia II. p. 596)

non Fuckel (Symb. myc. p. 146) neque Winter (Pyrenom. p. 208) nec Schröter

(Schles. Pyrenom. p. 309), Herpotrichia mucilaginosa Starb. et Grev. (Bidr. Ascom.

p. 8 tab. I. f. 5), Sphaeria macrotricha B. et Br. (Br. f. 619 tab. 9 f. 2), Herpo-

trichia macrotricha Sacc. Syll. f. II. p. 213).

Personalnotisen.

Prof. Dr. Franc. Saccardo starb am 6. October in Avellino.

Dr. W. Rothert wurde zum ausserordentlichen Professor an der

Universität Kazan ernannt.

A.N. Prentiss, Professor der Botanik an der Cornell University,

starb zu Ithaka am 14. August.

Dr. Karl Müller (Halle) wurde zum Professor ernannt.

Hierzu eine Beilage von R. Friedländer & Sohn, Berlin NW. 6,

Carlsstrasse 11.

Redaetion: Prof, Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von Paul Hennings und Dr. 6. Lindau in Berlin.

Druck und Verlag von C. Heinrich in Dresden.

Anseigen.

Verlag von Gebrüder Borntraeger, Berlin.

Soeben erschien:

Band XII pars I des bekannten Werkes von

Saccardo

Sylloge Fungorum omnium hucusque

cognitorum.

Bearbeitet von P. Sydow.

Dieser Band bringt ein Generalverzeichniss der Gattungen, Arten, Unter-

y arten und Varietäten der in den Bänden 1—11 aufgeführten Pilze mit jedesmaliger

= Angabe des Autors, der Band- und Seitenzahl, des Substrates und Heimathlandes.

Der Band zerfällt in vier Abtheilungen und zwar bringt

FR Abtheilung I die auf Pflanzen und Pflanzentheilen vorkommenden Pilze,

; Abtheilung 2 die Arten, welche auf Menschen, Thieren und thierischen

AR Bestandtheilen auftreten,

4 Abtheilung 3 die auf Excrementen und Abfallstoffen,

Abtheilung 4 die auf Erde, Stein, Torf etc. vorkommenden Arten.

Bi: Da die Bände 9, 10 und 11 des Sylloge nur Ergänzungen zu Band 1—8 ent-

7 halten, wird die Benutzung des Werkes sehr erschwert. Mit Hilfe dieses General-

R- verzeichnisses ist es nun äusserst leicht, jede beliebige Art sofort aufzufinden.

E Zugleich möchten wir darauf hinweisen, dass Pars II ein alphabetisch ge-

4 ordnetes Verzeichniss der Nährpflanzen der Pilze mit Angabe sämmtlicher

bisher bekannten Pilzarten bringen wird.

Wir machen daher die Abnehmer der früheren Bände auf das Erscheinen

dieser Fortsetzung, durch welche der Werth des ganzen Werkes wesentlich er-

höht wird, aufmerksam,

4 Im gleichen Verlage erschien soeben:

N z - “

% Index desmidiacearum

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Opus subsidiis et ex aerario regni suecani et ex pecunia regiae societatis

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Repertorıum

kryptogamische Literatur

Beiblatt zur „Hedwigia“.

Band XXXY. | eu am 25. Februar. | 1896. Nr. 7.

Elenchus fungorum novorum

qui post editum vol. XI „Sylloges fungorum“

usque ad finem Decembris MDCECCXCV innotuerunt*)

congessit

P. A. Saccardo.

Hymenomyceteae.

Sacc. Syll.V p.3, IX p.1, XI p.1.

Fam. 1. Agaricaceae Fr.

Sect. 1. Leucosporae.

Amanita lutea Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 27. Ad terram in Brem-

gartenwald, Helvetia.

— Forrestiae Kalchbr. ap. Mc. Alp. Syst. Arr. Austr. Fungi p. 30. Ad terram

in Australia occident.

Amanitopsis villosa Peck in Bull. Torr. Cl. 1895. p. 485. Sub Quercubus, California.

Lepiota imbricata P. Henn. Hedw. 1895. p. 333. Ad terram in Erythraea, Africa.

— aureo-violacea P. Henn. Fungi camer. I. p. 107. In truneis putridis, Kamerun.

— camerunensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 107. Ad terram, Kamerun.

fulvodisca Peck in Torr. bot. Cl. 1895. p. 198. Ad terram Pasadena, California.

— tepidaria Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 27. In tepidariis horti bot.,

Bern, Ilelvetia.

— vestita Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 28. In sabulosis pr. Heimbergbrücke,

Helvetia.

exannulata Ötth Bern. Mittheil. 1870. p. 89. (Agaricus). In graminosis Helvetiae.

— megalotheles Kalchbr. apud Mc. Alp. Arrang. Austr. Fungi p. 30. Ad ripas

fluviorum, Queensland, Australiae.

— minuta Voglino Bull. Soc. bot. Ital. 1896. p. 41. Ad terram incultam in

M. Generoso, Helvetiae.

Armillaria roborosa Britz. Hymenomyceten-Kunde I. p. 1 fig. 658. In silvis coni-

feris in Bavaria.

*) Adduntur fungi nonnulli minus recentes sed in voluminibus „Sylloges

fungorum‘“ casu practermissi. Notandae praesertim species a beato Otth multis

abhinc annis in „Mittheil. Bern.“ descriptae sed mycologis hodiernis omnino

ignotae (cfr. Syll. XI p. 314, nota), quarum certe multae nominibus aliis inscienter

a mycographis recentioribus editae sunt, sed quae jure merito revisioni sub-

jicendae sunt ut compertum fiat cui spectent.

Hedwigia Bd. XXAXV. 1890. 1

10.

Ba - 2a

Armillaria subimperialis Britz. Hymen. Kunde I. p. fig. 138, 469. In silvis Bavariae.

— mellea Vahl. var. eamerunensis P. Henn. F. camerun. I. p. 107. Ad truncos

putres, Kamerun.

— (Armillariella) distans Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 85. Gregatim ad truncos

emortuos, Congo.

Tricholoma lentum Post in Romell F. nov. v. crit. p. 65. Ad acus putrescentes

Abietis excelsae in Suecia.

— semivestitum Peck Bull. Torr. Bot. Cl. 1895. p. 185. In pascuis, arenosis

ad radices graminum, Kansas Amer. bor.

— sanguineo -album Britz. Hymen. Kunde I. p. 1 fig. 662. Ad sepes in Bavaria,

-— angustifolium Britz, Hymen. Kunde I. p. 1 fig. 665. In silvis pineis in Bavaria.

— convexo-planum Britz. Hymen. Kunde I. p. 2 fig. 666. In silvis coniferis in

Bavariae.

— eremeo-griseum Britz. Hymen. Kunde I. p. 2 fig. 670. In silvis Bavariae.

- carneo-flavidum Kalchbr. ap. Mc. Alp. Arrang. Austral. Fungi p. 30. Ad terram

in Australia occidentali.

— plagiotum Kalchbr. ap. Mc. Alp. Arrang. Austral. Fungi p. 30. Ad terram in

Australia occidentali.

— turbinipes Kalchbr. ap. Mc. Alp. Arrang. Austral. Fungi p. 30. Ad terram

in Australia occidentali.

Clitoeybe ceraceo-lamellata Britz. Hymen. Kunde I. p. 2 fig. 672. In silvis pineis

Bavariae.

— fusco-alutacea Britz. Hymen. Kunde I. p. 2 fig. 676. In silvulis Bavariae.

— subflexuosa Britz. Hymen. Kunde I. p. 3 fig. 683. In silvis montanis Bavariae.

— pusilla Peck in Torr. bot. Cl. 1895. p. 199. Ad terram Pasadena, California.

— rhodoleuca Romell Fungi nov. v. crit. p. 66. Ad acus Abietis excelsae in

Suecia.

-— umbrina Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 89 (Agaricus). In arenosis Helvetiac,

Collybia terpentina Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 29. Ad Bantigerhubel

pr. Bern, Helvetia.

— mierospora Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 486. Ad terram umbrosam,

Kansas Amer. bor.

— Zenkeri P. Henn. Fungi camer. I. p. 106. Ad truncos putres, Kamerun.

— arborescens P. Henn. Fungi camer, I. p. 106. Ad terram graminosam,

Kamerun.

— albo-grisea Peck in Torr. bot. Cl. 1895. p. 199. Ad terram Pasadena, Cali-

fornia.

— nivosula Berk. ap. Cooke Handb. Austral, p. 21. Hab. ad ramos putres

Victoria, Australiae.

Mycena ventricoso -lamellata Britz. Hymen. Kunde I. p. 3 fig. 692. In muscosis

silvaticis Bavariae.

— modestissima Britz. Hymen. Kunde I. p. 3. fig. 377. (Ag. modestus). In mus-

cosis silvarum Bavariae.

— griseo-fulva Britz. Hymen. Kunde I. p. 4 fig. 697. In silvulis Bavariae.

— caesia Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 486. Ad Sphagna, Newfoundland.

— fusco-umbonata Britz. Hymen. Kunde I. p. 4 fig. 698. In muscosis ad truncos

populeos in Bavaria.

— pura Pers. — var. gracilenta P. Henn. Pilze Ostafr. p. 60. In silvulis udis in

Africa tropica.

— elegantula Peck in Torr. bot. Cl. 1895. p. 199. Ad terram Pasadena, California.

Omphalia subintegrella P. Henn. Fungi camer. I. p. 105. Ad caudices putres

Calami, Kamerun.

— squalido-fusca Britz. Hymen. Kunde I. p. 4 fig. 704. In silvis pineis Bavaria.

— DI —

Omphalia n’dianensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 105. Ad folia putrida, N’dian

Kamerun.

Staudtii P. Henn. Fungi camer. I. p. 105. Ad folia putrida, Kamerun.

campestris Romell Fungi nov. v. crit. p. 69. In collibus muscoso - graminosis

Sueciae.

— pectinata Romell Fungi nov. v. crit. p. 68. In silvis coniferis in Suecia.

— semivestipes Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 200. In lignis putridis, Newfoundland.

— pichinchensis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 205. Ad terram in Aequatoria.

— nigripes Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 205. Ad terram in Aequatoria.

Pleurotus Fraxini Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 90. (Agaricus). Ad truncum

vetustum Fraxini in Helvetia.

— Tiliae Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 90. (Agaricus). In trunco cavo Tiliae

in Helvetia.

— properatus C. Mart. Contr. mvcol. genev. p. 177. Ad caudices arborum

frondosarum in Helvetia.

— submitis P. Henn. Fungi camer. I. p. 104. Ad truncos putres, Kamerun.

— phalliger Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 206. Ad truncos Euphorbiae in Aequa-

toria.

— euphylius Berk. in Handb. N. Z. p. 755, Cooke Handb. Austr. p. 37. Ad ligna

in Nova Zelandia et Qucensland, Australiae.

— lignatilis Fries — var. asper Voglino Bull. Soc. bot. Ital. 1896. p. 42. Ad ligna

in silvaticis, Canton Ticino, Helvetia.

Hygrophorus nigridius Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 211. Ad terram Prince

Edward’s Island Amer. bor.

— ericeti Britz. Hymen. Kunde I. p. 12. fig. 107. In cricetis Bavariae.

— parvipes Britz. Hymen. Kunde I. p. 12. fig. 108. In silvaticis in Bavaria.

— flavellus Britz. Hymen. Kunde I. p. 12. fig. 111. In silvaticis in Bavaria.

— sphaerosporus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 486. Ad terram Jowa

Amer. bor.

— kilimandscharicus P. Henn. Pilze Östafr. p. 59. Ad terram scissam in Africa

tropica.

— elegantulus Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 200. Ad terram Maryland.

— albus Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 36. Ad vias in Bremgartenwald,

Helvetia.

— hyporrhodius Otth in Trog. Bern. Mitth. 1857. p. 35. In Bremgartenwald,

Helvetia.

— alutaceo-rubens Otth in Trog. Bern. Mitth. 1857. p. 35. In Bremgartenwald,

Helvetia.

Lactarius albo-carneus Britz. Hymen. Kunde I. p. 13. fig. 73. In silvaticis Bavariae.

— sanguifluus Fr. var. yvreus C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 184. Sub

Pinubus in silva Yvre Helvetiae.

Russula intermedia Karst. Hedw. 1895. p. 7. In betuletis, Tammela Fenniae.

Acris; pileus fulvus, disco rubro-fulvo, 9—11 cm lat.; stipes albus 7 cm

alt., 2—3 cm. crass.

— cerasina C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 187. In silvis Helvetiae.

— Iuteo-viridans C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 187. In graminosis Helvetiae.

— Iuteolo-alba Britz. Hymen. Kunde I. p. 13. fig. 121. In silvaticis Bavariae.

Cantharellus parvus Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 36. In Bremgarten-

wald, Helvetia.

Arrhenia cupuliformis P. Henn. Fungi camer. I. p.96. Ad truncos putres, Kamerun.

Campanella P. Henn. Fung. camer. I. p. 95 (nov. gen.) Marasmio et Arrheniae

affınis; sed hymenium subreticulatum, inferum venis et costis anastomo-

santibus. Sporae pallidae subglobosae; basidia clavata.

50.

60.

75.

Campanella Büttneri P. Henn. Fungi camer. I. p. 95. Ad ligna putrescentia,

Kamerun.

Marasmius Englerianus P. Henn. Pilze Ostafr. p. 59. In truncis arborum in Africa

tropica.,

— Volkensii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 59. Ad terram udam graminosam in

Africa tropica.

— maranguensis P. Henn. Pilze Östafr. p. 59. Ad terram hortorum in Africa

tropica.

— subtomentosus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 487. Ad radices graminum in

sabulosis, Kansas Amer. bor.

— badius Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 287. Ad frustula uda dejecta, Kansas

Amer. bor.

— minutulus P. Henn. Fungi camer. I. p. 100. Ad ramos putres, Kamerun.

— barombiensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 99. Ad truncos putrescentes,

Barombi Kamerun.

— rufo-brunneus P. Henn. Fungi camer. I. p. 99. Ad folia putrida, Kamerun,

— favoloides P. Henn. Fungi camer. I. p. 99%. Ad folia putrida, Kamerun,

— atro-albus P. Henn. Fungi camer. I. p. 98. Ad ligna putrida, Kamerun.

— Zenkeri P. Henn. Fungi camer. I. p. 98. Ad ligna et folia putrescentia,

gregatim, Kamerun.

— discoideus P. Henn. Fungi camer. I. p. 96. Inter folia putrescentia in silvis

Kamerun.

— diseipes P. Henn. Fungi camer. I. p. 101. In caudicibus putridis, Kamerun.

— excentrieus P. Henn. Fungi camer. I. p. 101. Ad truncos putres, Kamerun.

— paradoxus P. Henn. Fungi camer. I, p. 101. Ad ramos putres, Kamerun,

— Dusenii P. Henn. Fungi camer. I. p. 100. Ad petiolos et alia fragmenta

vegetabilia, Kamerun.

— ceonico-papillatus P. Henn. Fungi camer. I. p. 100. Ad folia putrida, Kamerun.

— Friesianus P. Henn. Fungi camer. I. p. 100. Ad truncos putres, Kamerun,

— roseolus P. Henn. Fungi camer. I. p. 98. Ad ligna putrescentia, gregatim,

Kamerun.

— Hungo P. Henn. Fungi camer. I. p. 98. Ad ligna putrida, Kamerun.

— Cyathula P. Henn. Fungi camer. I. p. 96. Ad folia putrescentia in silvis,

Kamerun.

— palmicola P. Henn. Fungi camer. I. p. 102. Ad caudices putridos, Kamerun.

— subrhodocephalus P. Henn. Fungi camer. I. p. 97. Ad ligna putrida, Kamerun.

— Staudtii P. Henn. Fungi camer. I. p. 97. In silvis Kamerun.

— alliacioides P. Henn. Fungi camer. I. p. 97. Ad folia putrescentia, Kamerun.

— eitrinus P. Henn. Fungi camer. I. p. 96. Ad ramos putrescentes in silvis

Kamerun.

— melanopus Morg. New N. Amer. Fungi 1895. p. 36. tab. I. fig. 2. In foliis

vetustis insititius, Ohio Amer. bor.

— (Crinipellis) congoanus Pat. Bull. Soc. mycol 1895. p. 85. Ad ramos emortuos,

Congo.

Lentinus crateriformis P. Henn. Fungi camer. I. p. 9. Ad ramos putres,

Kamerun.

— Dybowskii Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 85. Ad fragmenta lignea dejecta,

Congo.

— discopus Pat. Bull. Soc. mycol 1895. p. 86. Ad truncos putres, Congo.

Panus papillatus P. Henn. Fungi camer. I. p. 95. Ad ramos putres, Kamerun.

— angustatus Berk. in Cooke Handb. Austral. p. 98. Ad ramos putres, Qucens-

land, Australiae.

100

105

110

Sir, VB u

Xerotus Drummondii Berk. ap. Cooke Handb, Austral. p. 100. Ad ramos emortuos

Victoria, Australiae.

— fulvus Berk. et Br. ap. Cooke Handb. Austral. p. 100. Ad ligna Queensland,

Australiae.

Schizophyllum Egelingianum EIl. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895 p. 439, In trunco

Magnoliae mexicanae, Mexico.

Lentodium Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 36. (Nov. gen.) Habitus Lentini

tigrini sed hymenium poroso-cellulosum, velo tandem radiatim dehiscente

tectum;, sporae ovoideae, hyalinae. — Ab auctore locatur prope Lentinum,

sed ob hymenium potius ad Polyporeas spectat.

— squamulosum Morg. I. c. tab. I. fig. 3, Ad truncos et ramos emortuos, Ohio

Amer. bor.

Sect. 2. Rhodosporae.

Volvaria arenaria Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 31. In sabulosis pr.

Heimbergbrücke, Helvetia.

— fragilis Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 31. In graminosis ad Brem-

gartenwald, Helvetia.

— striatula Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 487. Ad terram uliginosam, Kansas

Amer. bor.

Pluteus stercorarius Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 488. In fimetis Kansas

Amer. bor. j

— aurantio-rugosus Trog. in Bern. Mittheil. 1857. p. 32. Ad truncos populinos

ad Zulg Helvetiae (Ötth).

— eurtus Karst. Hedw. 1895. p. 7. In muscosis udis pr. Mustiala Fenniae.

Entoloma griseo - olivascens Britz. Hymen. Kunde p. 5. fig. 179. In paludosis

Bavaria.

— ferruginans Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 200. Ad terram Pasadena, California.

Clitopilus togo@nsis P. Henn. Fungi camer. I. p. 103. Ad terram, Togo.

Leptonia viridula P. Henn. Fungi camer. I. p. 104. Ad truncos putres, Kamerun.

— edulis Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 201. Ad terram Pasadena, California.

Eccilia camerunensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 104. Ad truncos et ramos,

Kamerun.

— Zenkeri P. Henn. Fungi camer I. p. 104. Ad ramos putres dejectos, Kamerun,

— nigrieans Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 201. Ad terram Pasadena, California.

Claudopus camerunensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 103. Adramos siccos, Kamerun.

Sect. 3. Ochrosporae.

Pholiota aurantio ferruginea Britz. Hymen. Kunde I. p. 5 fig. 422. Ad truncorum

basim in Bavaria.

— anomala Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 202. Pasadena California.

— subeonica Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 91 (Agaricus). In graminosis ad vias

Helvetia.

— violacea Voglino Bull. Soc. bot. Ital. 1896. p. 42. Ad terram graminosam in

M. Generoso Helvetiae.

Inocybe radiata Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 488. Ad terram graminosam

Amer. bor.

— oblongispora Britz. Hymen. Kunde I. p. 5. fig. 424. In silvis Bavariae.

— ceueullata C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 179. In graminosis Helvetiae.

— Tricholoma Alb. et Schw. var. vinosa Vogl. Bull. Soc. bot. Ital. 1896. p. 43

In silvis montanis, Canton Ticino, Helvetiae.

a 7% a ET nr al a a (ni Bi hi 50 tele in a u

115.

120.

125.

130.

135.

140,

: — VI

Hebeloma albido-cortinatum Britz. Hymen. Kunde I. p. 6. fig. 428. In silvaticis

Bavariae.

— fusiformi-radieatum Britz. Hymen. Kunde I. p. 6. fig. 429. In silvaticis Bavariae.

— foedatum Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 202. Ad terram Pasadena California.

violascens Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 33. Prope Bern, Helvetia.

— rubrum Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 33. Prope Bern, Helvetia in

graminosis.

— horticola Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 91 (Agaricus). In terra hortorum in

Helvetia.

— Kirtoni Kalchbr. ap. Mc. Alpine Arrang. Austr. Fungi p. 32. Ad terram

N. S. Wales, Australiae.

Flammula subsapinea P. Henn. Fungi camer. I. p. 102. Ad truncos putres, Kamerun.

— decurrens Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 489. Ad terram udam umbrosam,

Kansas Amer, bor,

anomala Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 202. Ad terram, Pennsylvania.

Naucoria fulvida Britz. Hymen. Kunde I. p. 7. fig. 435. In silvaticis Bavariae.

scabrispora Britz. Hymen. Kunde I. p. 7. fig. 437. In silvaticis Bavariae.

— populicola Britz. Hymen. Kunde 1. p. 7. fig. 432. In truncis Populi in Bavaria.

— Dusenii P. Henn. Pilze Östafr. p. 60. Ad truncos putres in Africa tropica.

— kilimandscharica P. Henn. Pilze Östafr. p. 60. Ad terram in Africa tropica.

Piuteolus luteus Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 203. Sub arboribus Pasadena California.

Tubaria pallescens Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 202. Ad folia et fragmenta lignea

in umbrosis, Pasadena California.

Crepidotus togoensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 102. Ad ramos putridos, Togo.

— echinosporus P. Henn. Pilze Östafr. p. 60. Ad ligna putrida in Africa tropica.

— ceinnabarinus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 489. Ad ligna dejecta, Michigan

Amer, bor,

Gortinarius virgatus Peck Torr. bot. Cl. 1895. p. 203. Pasadena California.

— odorifer Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 342. In silvaticis alpinis Bavariae.

- griseo -lilacinus Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 344. In silvaticis Bavariae.

— subflexuosus Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 345. In silvaticis Bavariae.

- subluteolus Britz. Hymen. Kunde I, p. 11 fig. 346. In silvaticis Bavariae.

— fulvo-Iuteus Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 348. In silvaticis Bavariae.

— perrarus Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 349. In silvaticis Bavariae.

- floccoso-fibrillosus Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 350. In silvaticis Bavariae.

— mellinus Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 351. In silvaticis Bavariae.

— definiendus Britz. Hymen. Kunde I. p. 11 fig. 354. In silvaticis Bavariae,

— dubitabilis Britz. Hymen. Kunde I. p. 12 fig. 360. In silvaticis Bavariae.

— truneigenus Britz. Hymen. Kunde I. p. 10 fig. 335. In truncis putridis in Bavaria.

lilacinopes Britz. Hymen. Kunde I. p. 10 fig. 337. In silvaticis Bavariae.

— eano-lilacinus Britz. Hymen. Kunde I. p. 10 fig. 340. In silvaticis Bavariae.

— erythraeus Berk. Hook. Lond. Journ. 1845. p. 48, Cooke Handb. Austral. p. 72.

Ad terram in silvis Victoria Australiae.

— (Myxacium) alpinus Boud. Bull. Soc. bot. Fr. 1894, p. CCXLVI et Bull. Soc.

myc. 1895. p. 27 tab. II fig. 1. In pascuis alpinis pr. hospitium Grand-

Saint-Bernard.

— (Phlegmacium) pelmatosporus C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 181. Sub

Quercubus in Helvetia.

Sect. 4. Melanosporae.

Agaricus Kiboga P. Henn. Pilze Ostafr. p. 60 (Psalliota). Adterram in Africa tropica,

— ealifornicus Peck Torr. bot. Club 1895. p. 203. Sub Quercubus, Pasadena

California,

le ern u 2 Beate hl ES 3 za sn Era A Da. ke. a A

Stropharia caesifolia Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 489. In pascuis sabulosis,

Kansas Amer. bor.

— paradoxa P. Henn. Myk. Not. I. (Bot. Ver. Prov. Brand. 1895) p. 4. In fimo

ad Halensee -Colonie, Grunewald, Germania.

— caryophyllacea Britz. Hymen. Kunde I. p. 8 fig. 266. In silvis Bavariae.

— bilamellata Peck. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 204. Ad vias Pasadena, Cali-

fornia.

Hypholoma longipes Peck Torr, bot. Cl. 1895. p. 204. Inter folia dejecta Pasadena,

California.

— ceutifraetum Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 490. Ad caudices Populi italicae,

Kansas Amer. bor.

— peltostes Kalchbr. ap. Mc Alpine Arrang. Austr. Fungi p. 32. Ad terram

N, South Wales, Australiae.

Bolbitius contribulans Britz. Hymen. Kunde I. p. 10 fig. 5. In serragine lignea

putri in Bavaria.

— marceseibilis Britz. Hymen. Kunde I. p. 10 fig. 6. In fragmentis putridis in

Bavaria.

— albipes Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 92. In pascuis Helvetiae.

— radians Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 36. tab. I. fig. 1. In stramine

putri, in fimo equino, Canada, Ohio.

Coprinus Jonesii Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 206. In cella vinaria, Vermont

Amer. bor.

— ebulbosus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 491. Caespitosus ad basim trun-

corum Populi moniliferae, Kansas Amer. bor.

— laniger Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 491. Caespitosus ad basim Populi

moniliferae, Kansas Amer. bor.

— apiculatus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895 p. 206. Ad terram Pennsylvania.

— grandisporus P. Henn. Hedw. 1895. p. 331. Ad terram in Erythraea, Africa.

— fuscellus Britz. Hymen. Kunde I. p. 9 fig. 275a. Ad terram in Bavaria.

— pulverulento-floccosus Britz. Hymen. Kunde I. p. 9 fig. 275. In fimo vaccino

in Bavaria,

— inerassatus Britz. Hymen. Kunde I. p. 9 fig. 276. In fimo equino in Bavaria.

— lanato-furfurosus Britz. Hymen. Kunde I. p. 9 fig. 277a. In fimo equino in

Bavaria.

— calyptratus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 205. Ad terram cultam, Kansas,

Panaeolus digressus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 205. In fimetis. Pasadena

California.

— intermedius Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895 p. 205. In rejectamentis, Pasadena

California.

Psathyrella graveolens Sacc. in Dom. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896. tab. 1. n. 1,

Ad humum in calidariis Horti Bot. Patavini, Italia.

— leucostigma Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 490. Ad terram udam umbrosam,

Kansas Amer. bor.

Fam. 2. Polyporaceae Fr.

Boletus thibetanus Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 196. tab. XII fig. 2. Ad

terram, Thibet orient.

— yiolaceus C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 192. Sub Pinubus in muscosis

Helvetiae.

— miniatus C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 191. In silvaticis Helvetiae.

— splendidus C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 190. In silvaticis umbrosis Helvetiae.

185.

190.

195.

200.

205.

210.

;

Boletus validus C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 190. Sub Quercubus in Helvetia.

— fragilipes C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 189. Ad terram in Helvetia.

— lacunosus Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 37. In Bremgartenwald,

Helvetia.

— fuligineo -spermus Britz. Hymen. Kunde I. p. 12 fig. 75. In silvis Bavariae.

— subaequalis Britz. Hymen. Kunde I. p. 14 fig. 77. In silvaticis Bavariae.

— (Phylloporus) intermedius Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 86. tab. XI fig. 3.

Ad terram Madagascar. Exacte medius inter Boletum et Paxillum.

— inflexus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 207. In silvaticis Pennsylvaniae.

— borealis Peck Bull. Torr, bot. Cl. 1895. p. 206. Ad terram arenosam Labrador.

Gyrodon capensis Sacc. (spec. nova mox edenda). Ad terram in Capite Bonae

spei et Natal.

Polyporus (Mesopus) fuligineo-albus Trog. in Bern. Mittheil. 1857. p. 38. Prope

Lauterbrunnen, Helvetia.

— (Apus) laxus Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 39. Ad Populi truncos

dejectos in Helvetia. Affinis videtur P. labyrinthico.

— (Ovini) esculentus Britz. Hymen, Kunde I, p. 14 fig. 172. In ramis putridis

Sarothamni in Bavaria.

— (Lenti) oehraceo-cinereus Britz. Hymen. Kunde I. p. 14 fig. 175. Ad truncos

pineos in Bavaria,

— (Lenti) erythroporus Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 38. In truncis corti-

catis et decorticatis fagineis pr. Bern, Helvetia. Effuso-reflexus, 3cm long.

multiplex, albidus, hymenio carneo, carne albo, pori minuti, brevissimi,

subangulati,

— pellitus Karst. Hedw. 1895. p. 7 (Bjerkandera\. In truncis et ramis Betulae

et Abietis pr. Mustiala Fenniae.

— aureo-marginatus P. Henn. Fungi camer. I. p. 89. Ad truncos putres, Kamerun.

— sericeus Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 53. Ad truncos vetustos, Aequatoria.

— squamulosus P. Henn. Pilze Östafr. p. 57. Ad truncos? in Africa tropica.

— anceps Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 207. In Tsuga canadensi, Massachusetts,

— pseudo-radiatus Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 207. Ad truncos arborum in

Aequatoria.

— S$aneti-Georgii Pat. Bull. Soc. mycol. 1895, p. 207. Ad truncos arborum in

Aequatoria.

Fomes albo-luteus Ellis et Ev. Proceed. Acad. Philadelph. 1895. p. 413. In truncis cari-

osis Abietis subalpinae, Colorado,

— minutulus P. Henn. Fungi camer. I. p. 88. Ad truncos, Kamerun.

— tinetorius Ell. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 362. Ad truncos et ramos

pineos, Alaska.

- eircumstans Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 37. tab. I. fig. 4 (Polyporus).

Ad truncos Shepherdiae argenteae, South Dakota.

— (Ganoderma) valesiacus Boud. Bull. Soc. bot. Fr. 1894. p. CCXLV et Bull.

Soc. myc. 1895. p. 28. Ad basim truncorum Laricis, Riffelalp Valesia.

- — faseieulatus Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 86. t. XI. f. 1. Ad caudices,

Congo.

Polystictus atro-albus P. Henn. Fungi camer. I. p. 92. Ad truncos? Kamerun.

— ekunduesis P. Henn. Fungi camer. I. p. 91. Ad truncos putres, Ekundu Kamerun.

— Holstii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 57. In ramis emortuis in Africa tropica.

— subflabellum P. Henn. Fungi camer. I. p. 91. Ad truncos putres, Kamerun.

— Gregorii Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot. 1895. p. 341. Ad cortices,

Africa orient.

Poria tephra Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 208. Ad ramos emortuos in Aequatoria.

BE ann de . h - iii a a en en. >;

EriuE: ı. ee

Poria xanthospora Underwood Proc. Indiana Acad. 1893. p. 61. Sub cortice relaxato

Populi heterophyllae, Indiana Amer. bor.

— Dusenii P. Henn. Fungi camer. I. p. 88. Ad cortices truncorum, Kamerun.

Henningsia Möll. Protobasid. p. 44 (Nov. gen.) Genus initio vere thelephoreum,

demum polyporeum.

— geminella Möll. I. c. Ad truncos in Brasilia.

Trametes trabea ÖOtth. Bern. Mittheil. 1870. p. 92. Ad truncos et ligna pinea,

quercina, faginea, populina in Helvetia.

— Fagi Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 93. In ligno fagineo fluctuato in Helvetia.

— nivea Ötth Bern. Mittheil. 1870. p. 94. Ad ligna pinea putrescentia in Helvetia.

— Chusqueae Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 54. t. Il. fig. 7. In truncis Chusqueae sp.

in Aequatoria.

— andina Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 208. Ad truncos vetustos in Aequatoria.

— Ellisiana P. Henn. Fungi camer. I. p. 92. Ad truncos Sierra Leone Africae.

— gausapata Cooke Grev. XV. p. 55 (1886). Ad truncos in Australia

Laschia (Favolaschia) saccharina Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 54. In truncis putridis

Chusqueae in Aequatoria.

— — Volkensii Bres. in P. Henn. Pilze Ostafr. p. 58. Ad ligna putrida in Africa

tropica.

— — Frieseana P. Henn. Fungi camer. I. p. 94. Ad petiolos putres Palmarum?

Kamerun.

— — lateritia P. Henn. Fungi camer. I. p. 93. Ad ramos putres, Kamerun.

— — bibundensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 94. Ad petiolos putres Elaeis

guincensis, Kamerun.

Fam. 3. Hydnaceae Fr.

Hydnum serotinum C. Mart. Contr. mycol. genev. p. 194. In muscosis montanis

sub nive in Helvetia.

— andinum Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 55. Ad truncos emortuos in Aequatoria.

— citreum Pat. Bull. Boiss. 1895. p.55. Ad truncos vetustos dejectos in Aequatoria.

— Dusenii P. Henn. Fungi camer. I. p..87. Ad cortices truncorum, Kamerun.

— atro-viride Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 38. tab. I. fig. 5. (Mesopus).

Ad truncos emortuos, Alabama Amer. bor.

Irpex brevidens Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 55. Ad ligna emortua in Aequatoria.

— quisquiliaris Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 55. Ad fragmenta lignea dejecta in

Aequatoria.

— ? lamellosus Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 56. Ad ligna putrescentia in Aequatoria.

Grandinia livescens Karst. Hedw. 1895. p.8 (Grandiniella). In ligno mucido Tiliae

pr. Mustiala Fenniae.

— fusco-lutea E. et Ev. Proc. Acad. Philadelph. 1895. p. 413. In truncis putridis

dejectis, New Jersey.

Odontia andina Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 56. Ad cortices et ligna putrida in

Aequatoria.

Fam. 4 Thelephoraceae Pers.

Thelephora (Stipitatae) pallida Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 38. Inter conos

abietinos et folia faginea in Bremgartenwald, Helvetia. — Erecta, simplex

v. furcata, spathulato-infundibularis, pallide carneolo-ochracea, 3—5 cm alta.

250.

255.

260.

265.

270,

Telephora subundulata Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 492. Ad terram, Delaware

Amer. bor.

Stereum flavo-ferrugineum Karst. Hedw. 1895. p.8 (Xerocarpus?). In ligno putrido

Pini pr. Mustiala Fenniae.

fusco-olivaceum Otth in Trog. Bern, Mittheil. 1887. p. 40. In ligno abietino

pr. Bern, Helvetia.

— fulvidum Ötth Bern. Mittheil. 1868. p. 39. Ad truncos in Helvetia.

Cortieium radicatum P. Henn. Pilze Ostafr. p. 54. In truncis emortuis in Africa

tropica.

— agglutinans Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 57. Ad truncos putres in Aequatoria.

— stratosum Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 57. Ad cortices in Aequatoria.

— ochraceo-lividum Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 57. Ad ligna emortua in Aequatoria.

Asterostroma pallidum Morg. New North Amer. Fungi, 1895. p. 38. tab I. fig. 6.

Ad ligna vetusta late cffusum, California.

Peniophora trachytricha E. et. Ev. Proc. Acad. Philadelph. 1895. p. 413. In

cortice ramorum (uercus, New Jersey.

Hypochnus andinus Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 58. Ad terram in Aequatoria.

— Euphorbiae Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 58. Ad truncos siccos Euphorbiae in

Aequatoria.,

Matruchotia complens Möll. Protobasid. p. 150. Ad truncos in Brasilia; ubi cl.

Möller etiam Matr. variantem Boulanger pluries observavit.

Exobasidium Giseckiae Allesch. in Henn. Pilze Ostafr. p. 54. In foliis floribusque,

quae deformantur, Giseckiae pharnacioidis in Africa tropica.

Cyphella Brayerae P. Henn. Pilze Östafr. p. 55. In petiolis Brayerae anthelminticae

in Africa tropica.

— usambarensis P. Henn. Pilze Östafr. p. 55. In ramis putrescentibus in Africa

tropica.

— variolosa Kalchhr. var, Volkensii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 55. In cortice

Erythrinae tomentosae in Africa tropica.,

— poriformis P. Henn. Fungi camer. I, p. 85. In vaginis foliorum Palmarum,

Kamerun.

— rufo-brunnea P. Ilenn. Fungi camer. 1. p- 88. Ad cortices, Kamerun.

— disciformis P. Henn. Fungi camer. I. p. 85. Ad culmos emortuos Penniseti,

Kamerun.

- globosa Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 209. In foliis Filicis cujusdam in

Aequatoria.

— Erica Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 209. Ad ligna vetusta in Aequatoria.

— filicola Cooke Grev. XIV.p.129 (1886). Ad frondes Adianti, Victoria, Australiae.

Craterellus pusu Berk. Fl. Tasım. II. p. 258, Cooke Handb, Austral. Fungi n® 966.

Inter muscos in Australia boreali.

Fam. 5. Clavariaceae Corda.

Sparassis Herbstii Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 207. Ad terram, Pennsylvania.

Lachnocladium strietum P. Henn. Fungi camer. I. p. 86. Ad ligna emortua,

Kamerun.

— Dusenii P. Henn. Fungi camer. I. p. 86. Ad terram arenosam, Kamerun.

Lachnocladium quangense P. Henn. Fungi camer. I. p. 86. In silvis ad terram,

Angola et Kamerun.

— galaxaurioides P. Henn. Pilze Ostafr. p. 55. In areis ustis in Africa tropica.

— pteruloides P. Henn. Pilze Ostafr. p. 55. Sub folia putrida in Africa tropica.

Pterula incarnata Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 58. Ad fragmenta lignea dejecta in

Aequatoria.

Pistillaria Penniseti P. Henn. Fungi camer. I. p. 86. Ad folia emortua Penniseti,

Kamerun.

Fam. 6. Tremellaceae Fr. (sensu lato).

Stypinella Schröt. Schles. Pilzl. p. 383. A gen. Hypochno praecipue basidiis

transverse articulatis cylindraceis recedit.

— orthobasidion Möll. Protobasid. p. 12 et 161. tab. IV fig. 1. In corticibus emortuis

in Brasilia.

Saccoblastia Möll. Protobasid. p. 162 (Nov. genus). Est quasi. Hypochnus sporis

pleurogenis, basidiis articulatis, cylindraceis. Sporae sphaericae v. ovoideac.

— ovispora Möll. I. c. tab. IV fig. 3. In corticibus putridis in Brasilia.

— sphaerospora Möll. I. c. tab. IV fig. 2. In corticibus putrescentibus in Brasilia.

Jola Möll. Protobasid. p. 162, tab. IV fig. 4 (Nov. gen.) — Membranaceo-incrustans;

basidia cylindracea, transverse septata acro-pleurospora; sporae falcatae,

magnae.

— Hookeriaruum Möll. I. c. p. 163. tab. IV fig. 4. In Hookeriis, Blumenau,

Brasilia.

Pilacrella Schröt. Schles. Pilzflora I. p. 384. Habitus fere Pilacres sed basidia

elongata transverse pluriseptata, auriculariacea. Huc P. Solani Cohn et

Schröt. (Syll. X p. 686).

— delectans Möller Protobasid. p. 164. tab. V fig. 18—33. In silvis Blumenau,

Brasilia.

Mylittopsis Pat. Journ. Bot. 1895. p. 247. (Nov. gen.). Receptacalum tuberculiforme,

indurato-gelatinosum ce fibris radiantibus omnino compositum, hymenio

amphigeno; basidiis rectis transverse septatis, paraphysibus immixtis.

— Langloisii Pat. I. c. Ad truncos in silvis paludosis Louisiana Amer. bor.

(Langlois).

Sebacina reticulata Pat. Bull. Boiss 1895. p. 59. Ad ligna denudata putrida in

Aequatoria.

— mucedinea Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 60. Ad fragmenta lignea dejecta in

Aequatoria.

Stypella Möll. Protobasid p. 166 (Nov. gen.) Est quasi Stypinella basidiis globulosis

tremellaceis.

— papillata Möll. I. c. tab. IV fig. 6. Ad ligna emortua pr. Blumenau Brasiliae.

— minor Möll. I. c. tab. IV fig. 7. Cum praecedente.

Platygloea blastomyces Möll. Protobasid. p. 163. tab. IV fig. 5. In corticibus

emortuis, Blumenau Brasiliae.

Heterochaete? solenia Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 69. Ad ramulos emortuos in

Aequatoria.

— Sanetae-Catharinae Möll. Protobas. p. 167. tab. IV fig.8. In corticibus emortuis,

Blumenau Brasiliae.

Sirobasidium Brefeldianum Möll. Protobasid. p. 165. tab. VI. In silvis pr. Blumenau

Brasiliae.

Exidiopsis Ols. in Bref. Untersuch. VD. p. 94. (Nov. gen.). Pelliculosa, tenuissima,

levis, incrustans; basidia globoso-ovata tremellacea; adsunt conidia hamata,

— glabra Möll. Protobasid. p. 168. Ad truncos emortuos pr. Blumenau Brasiliae.

300.

305.

310.

315.

320.

325.

— XI —

Exidiopsis ceiliata Möll. 1. c. p. 168. tab. II fig. 4. In corticibus putridis pr.

Blumenau Brasiliae,

— cerina Möll. Protobasid. p. 167. Ad ligna putrescentia pr. Blumenau Brasiliae.

— verruculosa Möll. I. c. p. 168. In corticibus putridis pr. Blumenau Brasiliae.

— tremellispora Möll. I. c. p. 168. In cortibus et lignis putridis pr. Blumenau

Brasiliae.

Exidia sucina Möll. Protobasid. p. 169. In cortibus putrescentibus pr. Blumenau

Brasiliae.

Tremella compacta Möll. Protobasid. p. 170. tab. I fig. 2, tab. IV fig. 12. In

corticibus putrescentibus pr. Blumenau Brasiliae.

— aurieularia MÖöll. I. c. p. 170. tab. IV fig. 16. In corticibus putridis pr.

Blumenau Brasiliae.

— fibulifera Möll. I. c. p. 170. tab. II fig. 3. In lignis putridis in silvis Blumenau

Brasiliae.

— anomala Möll. Protabasid. p. 171, tab. IV. fig. 11. In ramis emortuis pr.

Blumenau Brasiliae.

— spectabilis Möll. Protobasid. p. 171, tab. III. fig. 2. Ad truncos pr. Blumenau,

Brasiliae.

— fucoides Möll, Protobasid. p. 171. tab. II fig. 2, tab. IV fig. 17. Ad truncos

pr. Blumenau Brasiliae.

— damaecornis Möll. Protobasid. p. 172. tab. IV fig. 9. In truncis pr. Blumenau

Brasiliae.

— dysenterica Möll. Protobasid. p. 172. In fragmentis ligneis putridis udis pr.

Blumenau Brasiliae.

— setulosa P. Henn. Fungi camer. I. p. 83. Ad truncos putres, Kamerun.

— olivaceo.nigra Britz. Hymen. Kunde I. p. 16 fig. 28, Adtruncos pineos in Bavaria,

— faginea Britz. Hymen. Kunde I. p. 16 fig. 29. In truncis fagineis in Bavaria.

— ochracea Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 59. In trunco putri Chusqueae in

Aequatoria.

Protohydnum Möll. Protobasid. p. 173 (nov. gen.). Est Hydnum resupinatum

tremellaceum,

— cartilagineum Möll. l.c. t. IIL. f. 1, V.f.35. In ramis putridis pr, Blumenau, Brasiliae.

Hyaloria Möll. Protobasid. p. 173. (Nov. gen.). Fungus verticalis, columnaris, caespi-

tosus; fructificatio tremellacea.

— Pilacre Möll. I. c. p. 173 tab. I fig. 3 et V fig. 27. Ad caudices putres,

praesertim Palmarum (Euterpe) pr. Blumenau Brasiliae.

Craterocolla minuta Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 210 (Ditangium). Parasitica in

Perisporiaceca quadam ad folia arborea in Acquatoria.

Guepinia helvelloides P. Henn. Pilze Östafr. p. 53. In ligno putrescente in Africa tropica.

— camerunensis P. Henn. Fungi camer. I. p. 84. Ad ligna putrida, Kamerun,

— agaricina Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 210. (Guepiniopsis). Ad ligna putrida

in Aequatoria.

— andina Pat. Bull. Soc. mycol 1895. p. 211. (Guepiniopsis). Ad truncos putres

Chusqueae in Aecquatoria.

Gasteromyceteae Wild.

Sacc. Syll. Fung. VIlp. 1, IX p. 262, XI p. 252.

Floccomutinus P. Henn. Fungi camer. I. p. 109 (Nov. genus). — Receptaculum

stipitiforme, fasciato -compressum, pileo carens, in parte superiore pulpa

sporifera obtectum, annulato-sulcatum, dein floccis (trama?) vestitum.

Sporae tereti-ellipsoideae. — Mutino affinis.

— XII —

Floccomutinus Zenkeri P. Henn. l. c. In truncis vetustis, Kamerun.

Kalchbrennera Tuckii Kalchbr. et. M. Ow. — var. clathroides P. Henn. Fungi

camer. I. p. 108. Ad terram, Togo.

Cyathus affinis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 87, XXI fig. 4. In detritis ligneis,

Madagascar. An idem ac C. Lesueurii?

Secotium decipiens Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 492. Ad vias et in herbosis

in California.

Cycloderma apiculatum Annie Lorrain Smith in Journ. of bot. 1895. p. 340. Ad

terram silvestrem in Africa orient.

Tylostoma semisulcatum Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 209. Ad terram sabu-

losam, Nevada Amer. bor.,

Battarrea attenuata Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 208. Ad terram sabulosam,

Nevada Amer. bor.

Bovista limosa Rostr. Oest-Grönl. Svampe p. 10. Ad terram in Groenlandia orient.

— cellulosa E. et. Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 414. Ad terram, Colorado.

Lycoperdon umbrino-fuscum Pat. Bull. Boiss. 1895. p. 60. Ad terram pr. Quito

Aequatoriae.

— alpigenum E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 414. Ad terram prope trabes,

N. W. Colorado.

— Bellii Peek Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 209. Ad terram rupestrem Hudson's

Bay Amer. bor.

—- pileolatum Kalchbr. ap. Mc. Alpine Arrang. Austr. Fungi, p. 96. Ad terram

N. South Wales, Australiae.

- dryinum Morg. New N. Am. Fungi, 1895. p. 39. tab. II. fig. 10. Inter folia

dejecta in silvis quercinis, Ohio Amer. bor.

Calvatia lejospora Morgan New North Amer. Fungi, 1895. p. 39. tab. II. fig. 8.

In pascuis, South Dakota Amer. bor.

— hesperia Morgan New. N. Amer. Fungi, 1895. p. 39. tab. 11. fig. 9. In arenosis

Pasadena, Califoriniae.

Geaster velutinus Morgan New N. Amer. Fungi, 1895. p. 38. tab. I. fig. 7. Ad

terram, Columbia Amer. bor.

Scleroderma pisiforme P. Henn. Fungi camer. I. p. 110. Ad terram sub foliis

Kamerun.

Gautieria Otthii Trog in Bern. Mittheil. 1857. p. 43. In Hardlingsberg Helvetiae.

Receptaculum 2—3 cm diam. subglobosum. Loculi minutissimi, innumeri.

Sporae ovoideae, brunneae, intusgranulosae, breviter stipitatae; odor debilis,

ingratus.

Uredinaceae Brongn.

Sacc. Syll. VII.p. 449, IX p. 282, XI p. 175.

Uromyces elegans (B. et C.) Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 34. In foliis Trifolii

caroliniani in Amer. bor.

— Bauhiniae P. Henn. Fungi goyaz. p. 90. In foliis vivis Bauhiniae in Brasilia.

— goyazensis P. Henn. Fungi goyaz. p. 89. In ramulis inflorescentiae Bauhiniae

in Brasilia.

— Neurocarpi Diet. Hedw. 1895. p. 292. In foliis Neurocarpi cajanifolii, Bahia.

Amer. merid.

— Costi P. Henn. Hedw. 1895. p. 321, Ur. Dichorisandrae P. Henn. Fungi goyaz.

p. 91. In foliis Costi pumili in Brasilia.

— dubiosus P. Henn. Fungi goyaz. p. 91. In foliis Lantanae sp. in Brasilia.

355.

360.

370,

375.

— XV —

Uromyces manihoticola P. Henn. Fungi goyaz. p. 90. In foliis Manihot sp. in

Brasilia.

— Manihotis P. Henn. Fungi goyaz. p. 90. In foliis Manihot in Prasilia.

— (Pileolaria) Gnidoscoli P. Henn. Fungi goyaz. p. 90. In foliis Cnidoscoli viti-

folii in Brasilia.

— Alchemillae-alpinae Ed. Fisch. Bull. Soc. bot. Fr. 1894, p. CCNLI. In foliis

Alchemillae pentaphylleae et A. alpinae in Alpibus, Grand-Saint-Bernard etc.

andinus Lagerh. in Pat. Bull. Soc. mycol, 1895. p. 213. Ad folia Rubi sp. Quito

in Aequatoria.

Bidentis Lagerh. in Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 213. In foliis Bidentis

andicolae pr. Quito in Aecquatoria,

— quitensis Lagerh. in Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 213. In foliis Rubi sp. pr.

Quito Aequatoriae.

— Werneriae l.agerh, in Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 212. In foliis Werneriae

nubigenae, Chimborazo Aequatoriae. F

— pulchellus E. et. E. Nov. spec. Ust. Ured. p. 57. In foliis et petiolis Silenis?

in America bor.

Demetrianus Pazschke Hedw. 1895. p. (101). In foliis vivis Apocyni cannabini

in America bor.

— inconspicuus Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 69. In foliis Chenopodii, Alche-

millae, Galeopsidis, Fragariae, Polygoni, Cannabidis, Solani, Amarant. in

Helvetia. Sporae nigro-fuscae, ellipsoideae, leves, 32 — 18, apiculo nunc

minutissimo, hyalino, verruciformi, nunc planae nullo; stipes hyalinus,

brevissimus, vix diametro longior; caespituli punctiformes, atri, oligospori.

— «(Juid sit haec species pantogena me latet, certe dubia res.»

— Gladioli P. Henn. Hedw. 1895. p. 326. In foliis Gladioli angusti in Capite

Bonae spei.

bicolor Ellis in Contrib. U, S. Nation. Herbar. IV. p. 231. In foliis Allii validi,

California.

— caricinus E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. p. 58. In foliis et culmis Caricis

scopariae in America boreali.

— minimus Davis Botan. Graz. 1894. p. 415. In foliis Mühlenbergiae silvaticae,

Wisconsin,

— Cunninghamianus Barcl. — var. somalensis P. Henn. Fungi somal. p. 2. In

foliis, petiolis ramisque Jasmini, Somalia Africae.

Melampsora Euphorbiae-duleis Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 70. In foliis Euphorbiae

dulcis in Helvetia,

— alpina Juel Mykol. Beiträge I. p. 417. In foliis Salicis herbaceae et S. polaris

in Norvegia et Suecia. — Uredosporae aurantiae, 18— 15, spinulosae.

Teleutosporae Mel. farinosae sed subcutanee evolutae.

— Ruspoliana P. Henn. Fungi somal. p. 2. In foliis vivis Vernoniae sp., Somalia,

Africae.

— Pedicularis Voglino Bull. Soc. bot. ital. 1896. p. 38. In foliis Pedicularis verti-

cillatae M. Generoso, Helvetiae.

Phacopsora Dietel Berichte deut. bot. Gesell. 1895. p. 333 (nov. gen.). A Melampsora

praecipue teleutosporis stratosis in corpus lentiforme conjunctis recedit.

— punetiformis (Barcl.) Diet. I. c. In foliis Galii Aparines, Himalaya.

Schizospora Dietel in Ber. deut. bot. Gesell. 1895. p. 334 (nov. gen.) Affinis

Pucciniosirae, sed teleutosporae non catenulatae.

— Mitragynes Dietel |. c. t. XXVI. fig. 15. In foliis Mitragynes macrophyllae

penitus immersa, Sierra Leone.

Puccinia Onobrychidis Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 68. In foliis Onobrychidis

sativac in Helvetia,

401

Puceinia denticulata Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 69. In foliis Möhringiae trinerviae

in Helvetia.

Trifoliatae E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. p. 58. In caulibus foliisque Tiarellae

trifoliatae in America bor.

Philibertiae E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. p. 60. In foliis et folliculis Phili-

bertiae viridiflorae in Amer. bor.

- Hemipogonis P. Henn. Fungi goyaz. p. 92. In ramis Hemipogonis setacei in

Brasilia.

- Ziziae E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. p.60, In foliis Ziziae cordatae in America bor.

- Ligustiei EIl. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895, p. 363. In foliis Ligustici

scopulorum, Colorado.

Oxalidis Diet. et Ell. Hedw. 1895. p. 291. In foliis Oxalidis sp. in Mexico.

- septentrionalis Jucl Mykol. Beitr. IV. p. 383, P. mammillata Juel Mykol. Beitr. I.

nec Schröt. In foliis Polygoni vivipari in montibus Scandinaviae; aecidio-

sporae in Thalictro alpino (Aecidium Sommerfeltii Johans.) ibique et in

Helvetia, Groenlandia, Islandia.

Banisteriae P. Henn. Fungi goyaz. p. 94. In foliis Banisteriae sp. in Brasilia.

destruens P. Henn. Fungi goyaz. p. 92. In foliis ramisque Euphorbiaceae

arboreae cujusdam in Brasilia.

Nephrophylli P. Henn. Pilze Östafr. p. 50. In foliis Nephrophylli sp. in Africa

tropica.

- elaviformis Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 53. In foliis Solani sp. in Surinam.

(Schweinitz sub Aecidio solanito.)

Chaetogastriae Lagerh. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 214. In foliis Chaetogastrae

in Aequatoria,

Blechi Lagerh. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 214. In foliis Blechi in Aequatoria.

Ruelliae (B. et Br.) Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 71. In foliis Ruelliae pro-

stratae, Ceylon (sub Ured. Ruelliae).

Paranahybae P. Henn. Iledw. 1895. p. 320. In foliis Ruelliae sp., Goyaz Brasilia.

Thunbergiae alatae P. Henn. Pilze Ostafr. p. 50. In foliis Thunbergiae alatae

in Africa tropica.

Schlechteri P. Henn. Hedw. 1895. p. 326. In foliis Gomphocarpi Schinziani,

Transvaal.

Nesaeae EIl. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 363 (St. teleut. Accidii Neseae Ger.),

In foliis Nesaeae verticillatae, Missouri.

Acocantherae P. Henn. Pilze Ostafr. p. 50. In foliis Acocantherae Schimperi

in Africa tropica.

aequalis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 50. In foliis Antidesmae? in Africa tropica.

Elytrariae P. Henn. Hedw. 1895. p. 320. In foliis Elytrariae crenatae in Brasilia.

- Vleana P. Henn. Fung. goyaz. p. 93. In foliis Caleae (Compositae) in Brasilia,

Mutisiae Lagerh. in Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 213. In foliis caulibusque

Mutisiae sp. in Aequatoria,

horrida Lagerh. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 214. In foliis Eupatorii in Aequatoria.

vernoniicola P. Henn. Pilze Ostafr. p. 50. In foliis Vernoniae sp. in Africa

tropica.

macroecia E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. p. 59. In foliis Asteris pulchelli in

America boreali.

Mölleriana P. Henn. Hedw. 1895. p. 336. In foliis Baccharidis sp. in Brasilia.

spectabilis Otth Bern. Mittheil. 1865. p. 176. In pag. inf. foliorum Cirsii

ochroleuci pr. Giessbach Helvetia. Comparanda cum speciebus cirsiicolis

posterius descriptis.

longipes Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 64. In caule v. petiolo Ambrosiae sp.

in America borealis (Schw. sub P. bullata).

405.

410.

415.

425.

430,

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— XVI —

Puceinia lateritia B. et C., Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 63. In foliis Spermacoces (?)

in Surinam.

Mougeotii Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 66 et 131. In foliis caulibusque Thesii

alpini in Gallia (Mougeot!.

- Boehmeriae P. Henn. Hedw. 1895. p. 336. In foliis Boehmeriae spec. in Brasilia.

biformis Lagerh. Bol. Brot. VIII. 1890. In foliis Rumicis bucephalophori in

Lusitania.

Quercus Ötth Bern. Mittheil. 1868. p. 68. In foliis Quercus in Helvetia.

Ficalhoana L.agerh. Bol. Brot. VIII, 1890. In foliisScillae campanulatae in Lusitania.

Pitcairniae Lagerh. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 214. In foliis Pitcairniae in

Aequatoria,

granulispora Ell. et Galloway. Nov. spec. Ust. Ured. p. 61. In caulibus foliisque

Allii cernui in America boreali.

- Habenariae P. Henn. Pilze OÖstafr. p. 50. In foliis caulibusque Habenariae sp.

in Africa tropica. *

subcoronata P. Henn. Fung. goyaz. p. 94. In foliis vivis Cyperi sp. in Brasilia.

canaliculata (Schw.) Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 51. In Cypero et in invo-

lucro Scirpi in Amer. bor.

nigrovelata Ell. et Tracy Mississippi Fungi 1895. p. 86. In Cypero strigoso,

Mississippi.

Cladii Ell. et Trac. Mississippi Fung. 1895. p. 84. In Cladio effuso, Mississippi.

Vaginatae Juel.e On nögra heter. Ured. p. 56. In foliis Caricis vaginatae in

Jemtlandia, Uredosporae 22 = 16, echinulatae, ferrugineae; teleutosporae

41—48 = 16—20, fuscae, pedicelli persistentes 40-50 u long.

Schröteriana Klebahn in Zeitschr. f. Parasitenk. 1895. p. 261. In foliis Caricis

(Goodenoughii, Oldenburg, intermixto statu aecidiosp. (Aecidium Serra-

tulae Schröt.)

rupestris Juel. On nögra heter. Ured. p. 56. In foliis culmgsque Caricis rupe-

stris in Jemtlandia. Uredosporae 25 — 19; teleutosporae 34—44 — 14—20,

pedicellis 30 — 40 u long. Aecidium Saussureae rupestre Juel promiscue

crescens est status aecidiosporus.

omnivora E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. (N. A. F. 3049) p. 59. In foliis Chry-

sopogonis nutantis in America boreali.

substerilis E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. (N. A. F. 3141) p. 58. In foliis Chry-

sopogonis sp. in America bor.

nemoralis Juel. Mycol. Beitr. III. p. 506 cum iconibus. In foliis Moliniae

coeruleae in Suecia. Aecidiosporae Aecidii Melampyri K. et S.; teleuto-

sporae Pucc. Moliniae similes, sed plerumque breviores et longius stipitatae.

Ut notum est ad P. Molinia spectat Aecidium Orchidearum Desm.

Andropogonis Otth Bern. Mittheil. 1863. p. 86. In foliis Andropogonis Ischaemi,

Steffisburg Helvetia. Verisimiliter congruit cum quadam specie posterius

descripta.

solenodonta Otth Bern. Mittheil. 1863. p. 86. In foliis Holci lanati, Steffisburg.

Verisim. forma P. coronatae.

amphigena Diet. Hedw. 1895. p. 291. In foliis Calamagrostidis canadensis,

Illinois Amer. bor.

Piptatheri Lagerh. Bol. Brot. 1890. vol. VIIL. In Piptathero multifloro in Lusitania.

Arundinariae Schw., Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 48. In foliis Arundinariae

macrospermae in Amer. bor.

oahuensis EIl. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 435. In foliis graminum (Panici

vel Holei) in ins. Sandwich.

Leontopodii Voglino Bull. Soc. bot. ital. 1896. p. 37. In foliis Leontopodii

alpini, Canton Ticino Helvetiae.

— XVII —

Puceinia Coprosmatis Morrison in Mc. Alp. Arrang. Austr. Fungi, p. 200. In foliis

Coprosmatis Billardieri et Operculariae variae, Victoria, Australiae.

— rimesa Link, Wint. in Hedw. 1880. p. 28. In calamis Isolepidis nodosae, 460.

Victoria, Australiae,

Diorchidium goyazense P. Henn. Fung. goyaz. p. 94 (Puccinia). In foliis Panici

sp. in Brasilia.

— flaecidum (B. et Br.) Lagerh. Ured. herb, Fries. p. 80. In foliis Panici in Ceylon.

Gymnoconia Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 84. (nov. gen.) St. aecidiosp. Aecidium

nitens Schw.; st. teleutosp. Puccinia Peckinia Howe, Caeoma interstitiale

Schlecht. — Generi Pucciniac affınis (nimis?).

— interstitialis (Schlecht.) Lagerh. I. c. In foliis Ruborum in America bor.

Ravenelia opaca (Seym. et Earle) Diet. Hedw. 1895. p. 291. In foliis petiolisque 465.

Gleditschiae Triacanthi, Illinois Amer. bor,

— arizonica El. et Ev. Bull. Torr. C1. 1895. p. 363. In foliis Prosopidis juliflorae,

Arizona.

— Stuhlmanni P. Henn. Fungi camer. I. p. 82. Ad folia Cassiae Petersianae,

Usambara, Africa,

— Acaciae-Farnesianae P. Henn. Hedw. 1805. p. 321, Rav. Mimosae P, Henn.

Fungi goyaz. p. 95. In ramulis et petiolis Acaciae Farnesianae in Brasilia.

— Uleana P. Henn. Fungi goyaz. p. 96. In foliis Cassiae sp. in Brasilia.

— goyazensis P. Henn. Fungi goyaz. p. 96. In foliis Andirae Pisonis in Brasilia. 470.

— Dieteliana P. Henn. Fungi goyaz. p. 96. In foliis Calliandrae macrocephalae in

Brasilia.

— Munduleae P. Henn. Fungi somal. p.3. In foliis Munduleae suberosae, Somalia,

Africa.

Cronartium usneoides P. Henn. Fungi goyaz. p. 95. In foliis Conyzae sp. in

Brasilia.

— Bresadoleanum P. Henn. Pilze Ostafr. p. 51. In foliis Erythroxyli sp.? in

Africa tropica.

— Gilgianum P. Henn. Fungi camer. I. p. 83. Ad folia coriacea arboris ignotac, 475.

Benguella, Africa.

Masseeella Diet. Berichte deut. bot. Gesell. 1895. p. 332. (nov. gen.) A gen. Cronartio

differt defectu Uredosporarum, teleutosporis gelatina obvolutis ete.

— Capparidis (Hobs.) Diet. I. c. tab. XXVI fig. 14, Cronartium Hobs., Syll,

Fung. VII. p. 599. In foliis Capparidis, Bombay, India.

Aecidium immersum P. Henn. Hedw. 1895. p. 330. In ramulis Acaciae abyssinicae

in Erythraea.

— Glyeines P. Henn. Pilze Ostafr. p. 52. In foliis Glycines javanicae in Africa

tropica.

— Crotalariae P. Henn. Pilze Östafr. p. 52. In foliis Crotalariae grandibracteatae 480.

in Africa tropica.

— Sphaeralceae Ell. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 364. In foliis Sphaeralceae

angustifoliae, New Mexico.

— Cerastii Otth Bern. Mittheil. 1863. p. 89. In foliis Cerastii silvatici Brem-

gartenwald, Helvetia. Comparandum cum Aec. Cerastii Wint,. posteriore.

Hyperiei P. Henn. Pilze Ostafr. p. 52. ‘In foliis Hyperici lanceolati in Africa

tropica.

— Vitis Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot. 1895. p. 362. In foliis Vitis in

Africa orient.

— Anonae P. Henn. Fungi goyaz. p. 100. In foliis Anonae sp. in Brasilia. 485.

— anonaceicola P. Henn. Fungi goyaz. p. 101. In foliis vivis Anonaceae cujus-

dam in Brasilia.

— Hyptidis P. Henn. Hedw. 1895 p. 337. In foliis Hyptidis spec. in Brasilia.

Hedwigia Ba, XXAXTV. 18906. 4

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— XVII —

Aecidium Tournefortiae P. Henn. Hedw. 1895 p. 338. In foliis Tournefortiae

spec. in Brasilia.

— maiapontense P. Henn. Hedw. 1895. p. 321. In foliis Acanthaceae spec. in

Brasilia.

— byrsonimaticola P. Henn. Hedw. 1895. p. 321. In foliis Byrsonimatis in

Brasilia.

— Byrsonimatis P. Henn. Fungi goyaz. p. 101. In foliis caulibusque Byrsonimatis

sp. in Brasilia.

— Isnardiae Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 102. In foliis Isnardiae sp. Ohio

Amer. bor.

— Eriosematis P. Henn. Fungi goyaz. p. 103. In foliis vivis Eriosematis sp. in

Brasilia.

— goyazense P. Henn. Fungi goyaz. p. 101. In foliis caulibusque Loranthi in

Brasilia.

— Scorzonerae Lagerh. Ured. herb. Fries. p. 105. In foliis Scorzonerae angusti-

foliae in Gallia (Castagne).

— kilimandscharicum P. Henn. Pilze Östafr. p. 53. In foliis Senecionis multi-

corymbosi in Africa tropica.

— Agerati P. Henn. Pilze Ostafr. p. 53. In foliis caulibusque Agerati cony-

zoidis in Africa tropica.

— Saussureae Johans. Bot. Not. 1886 p. 168. a silvestre Juel. om nögra heter,

Ured. p. 53 (maculis numerosis; cellulis peridialibus 27—34 « lat.; sporis

14—18 « diam.) — # rupestre (maculis parcissimis; cellulis perid. 20 « lat.;

sporis 15—20 « diam.). In foliis Saussureae alpinae, « in regione abietina

et betulina, $ in regione betulina et alpina inf. in Jemtlandia.

— Leonotidis P. Henn. Pilze OÖstafr, p. 52. In foliis Leonotidis velutinae in

Africa tropica.

— Acanthi Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot 1895 p. 343. In foliis Acanthi

spec. in Africa orient.

— Salaciae P. Henn. Fungi goyaz. p. 100. In foliis Salaciae sp. in Brasilia.

— Pouchetiae Sacc. Fl. mycol. Lusit. App. p. 61. In foliis vivis Pouchetiae

parviflorae ad littora St. Thome.

— Xylopiae P. Henn. Fungi goyaz. p. 100. In foliis Xylopiae sp. in Brasilia.

— eylindrieum E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. p. 61. In foliis Houstoniae angusti-

foliae in Amer. bor.

— Cnidoscoli P. Henn. Fungi goyaz. p. 102. In foliis vivis Cnidoscoli vitifolii in

Brasilia.

— jasminicola P. Henn. Pilze Östafr. p. 53. In foliis Jasmini Meyeri-Johannis in

Africa tropica.

— Heteromorphae Annie Lorrain Smith in Journ. of. Bot. 1895. p. 342. In caulibus

et petiolis Heteromorphae sp. in Africa orient.

— Kraussianum P. Henn. Pilze Ostafr. p. 53. In foliis Smilacis Kraussianae in

Africa tropica.

Uredo cassiicola P. Henn. Fungi goyaz. p. 98. In foliis Cassiae sp. in Brasilia,

— (Ravenelia) maranguensis P. Ilcnn. Pilze Ostafr. p. 51. In foliis Indigoferae

arrectae in Africa tropica.

— — mruariensis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 51. In foliis Cassiae goratensis in Africa

tropica.

— — Longipedis P. Henn. Fungi goyaz. p. 97. In foliis Calliandrae longipedis in

Brasilia.

— bauhiniicola P. Henn. Fungi goyaz. p. 98. In ramulis Bauhiniae rubiginosae in

Brasilia.

— Dalbergiae P. Henn. Fungi goyaz. p. 98. In foliis Dalbergiae in Brasilia.

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— XIX —

Uredo Lentis Lagerh. Bull. Soc. Mycol. 1895. p. 215. In caulibus foliisque Lentis

esculentae in Aequatoria.

Hyperici-Schimperi P. Henn. Pilze Ostafr. p. 51. In foliis Hyperici Schimperi

in Africa tropica.

Terminaliae P. Henn. Hedw. 1895. p. 321, U. Byrsonimatis P. Henn. Fungi

goyaz. p. 98. In foliis Terminaliae argenteae in Brasilia.

Eugeniarum P. Henn. Hedw. 1895. p. 337. In foliis Eugeniarum in Brasilia.

Pithecolobii P. Henn. Fungi goyaz. p. 98. In ramulis Pithecolobii sp. in Brasilia.

uberabensis P. Henn. Hedw. 1895. p. 321. In foliis Byrsonimatis sp. in Brasilia.

capituliformis P. Henn. Fungi goyaz. p. 97. In foliis Alchorneae sp. in Brasilia.

Forsteroniae P. Henn. Fungi goyaz. p. 99. In foliis ramulisque Forsteroniae

sp. in Brasilia.

Licaniae P. Henn. Fungi goyaz. p. 99. In foliis Licaniae in Brasilia,

Cupheae P. Henn. Fungi goyaz. p. 99. In foliis Cupheae sp. in Brasilia.

Hyptidis P. Henn. Fungi goyaz. p. 100. In foliis Hyptidis scabrae in Brasilia.

eupatoriicola P. Henn. Hedw. 1895. p. 337. In foliis Eupatorii sp. in Brasilia.

Crotonis P. Henn. Fungi goyaz p. 99. In foliis Crotonis sp. in Brasilia.

velata Ell. ct Ev. Bull. Torr. C1. 1895. p. 435. In foliis Euphorbiae cordatae

in insula Sandwich.

Schoenocauli Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 438. In Schoenocaulo gracili,

Florida.

psychotriicola P. Henn. Hedw. 1895. p. 321. In foliis Psychotriae spec. in

Brasilia.

Leonotidis P. Henn. Pilze Östafr. p. 52. In foliis Leonotidis velutinae, cum

Aecidio, in Africa tropica.

cancerina P. Henn. Hedw. 1895. p. 330. In caulibus Leonotidis velutinae in

Erythraea, Africa.

Bomareae Lagerh. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 215. In foliis Bomareae in Aequatoria.

Cherimoliae Lagerh. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 215. In foliis Anonae Cherimoliae

in Aequatoria.

Eucharidis Lagerh. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 215. In foliis Eucharidis candidae

in Aequatoria.

Holstii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 52. In foliis Psychotriae sp. in Africa

tropica.

Psychotriae-Volkensii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 52. In foliis Psychotriae Volkensii

in Africa tropica.

Achyranthis P. Henn. Pilze Östafr. p. 51. In foliis Achyranthis asperae in

Africa tropica.

Periplocae P. Henn. Pilze Ostafr. p. 52. In foliis Periplocae linearis in Africa

tropica.

tangaensis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 51. In foliis Euphorbiae sp. frutescentis

in Africa tropica.

(Melampsora) Euphorbiae-Engleri P. Henn. Pilze Ostafr. p.51. In foliis Euphorbiae

Engleri in Africa tropica.

(Caeoma) aberrans Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 210. In cortice vivo

Alni, Newfoundland.

cypericola P. Henn. Pilze Ostafr. p. 52. In foliis Cyperi sp. in Africa tropica,

abscondita Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 171. In foliis convolutis Festucae

heterophyllae, Cöte d’Or, Gallia.

Andropogonis-lepidi P. Henn. Pilze Ostafr. p. 52. In foliis Andropogonis lepidi

in Africa tropica.

Gymnogrammes P. Henn. Hedw. 1895. p. 337. In foliis Gymnogrammes sp. in

Brasilia.

510,

525.

530.

540.

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—

Ustilaginaceae |ul.

Sacc. Syll. VII. p. 451, IX. p. 282, XI. p. 230.

Ustilago Arenariae Ell. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 362. In inflorescentia

Arenariae congestae, Colorado,

— seminum Juel Mycol. Beitr. II. p. 491, Bref. Unters. XII. p. 119. In seminibus

Arabidis petraeae in Scandinavia. — Massa spor. umbrina; sporae 13 u

diam. vel 19 — 9, crassiuscule papillosae pallidae.

— Adoxae Bref. Unters. XI. p. 119. t. VII. In rhizomate Adoxae Moschatellinae,

Münster, Germania.

— Vrieseana Vuillemin Comptes rendus 1894. p. 933, Zeitschr. für Pflanzenkr.

1895. p. 113. In truncis, ubi tumores gignit, Eucalyptorum in horto

botanico Amsterdam.

— Lagerheimii Bref. Unters. XII. p. 136, t. VII. In caulibus et petiolis Rumicis

sp. in Aequatoria (Lagerheim). |

— Mölleri Bref. Unters. XII. p. 132. In fructibus Polygoni hispidi in Brasilia (Möller).

— domestica Bref. Unters. XU. p. 135, t. VIIl. In axi Rumicis domestici in

Norvegia.

— Koordersiana Bref. Unters. XII, p. 132. t. VIII. fig. 5—6 (U. Polygoni barbati).

In fructibus Polygoni barbati, Java.

— Welwitschiae Bres. in Sacc. Fl. mycol. Lusit. App. 61. In squamis conorum 5

Welwitschiae mirabilis, Mossamedes Afr.

— subolivacea P. Henn. Fungi Somal.p. 1. In ovariis Caricis ramosae, Somalia,

Africa.

— Schlechteri P. Henn. Hedw. 1895. p. 325. In paniculis Sporoboli sp., Transvaal.

— Dactyloetaenii P. Henn. Pilze Östafr. p. 48. In inflorescentia Dactyloctaeni

aegyptiaci, Sansibar, Africa.

— Aristidae-cyananthae Bref. Unters. XII. p. 102, t. VI. In fructibus Aristidae

cyananthae in India or. (Cunningham).

— Paniei-frumentacei Bref. Unters. XII. p. 102, t. VI. In ovariis Panici frumen- 51

[+1

tacei in India or. (Barclay).

— Coieis Bref. Unters. XII. p. 110, t. VI. In fructibus Coicis Lacrimae in India

or. (Barclay).

— Paniei-leucophaei Bref. Unters. XII. p. 114. t. VI. In inflorescentia Panici

leucophaei, Brasilia (Ule).

— tumefaciens P. Henn. Pilze Ostafr. p. 48. In inflorescentia Andropogonis rufi

in Africa tropica.

— heterospora P. Henn. Pilze Östafr. p. 48. In floribus Panici maximi in Africa

tropica.

— pustulata Tracy et Earle Miss. Fungi, 1895. p. 92. In ovariis Panici proliferi, ul

Mississippi.

— ugandensis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 48. In spieis Panici in Africa tropica.

— ornata Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 92. In ovariis Leptochloae

ornatae. Mississippi.

— monilifera Ell. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 362. In ovariis Heteropo-

gonis contorti, Arizona.

— Mulfordiana Ell. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 362. In paniculis Festucae,

Idaho.

— Washingtoniana E. ct E. New spec. Ust. Ured. p. 57. In foliis Graminearum

quarumdam in America bor.

—. Sacchari-ciliaris Bref. Unters. XII. p. 109. t. VI. In inflorescentia Sacchari

ciliaris in India orient. (Cunningham).

— XXI —

Ustilago Andropogonis-annulati Bref. Unters. XII. p. 109. t. VI. In inflorescentia

Andropogonis annulati in India orient. (Cunningham).

— Boutelouae-humilis Bref. Unters. XII. p. 116. t. VII. In inflorescentia Boutelouae

humilis in Acquatoria (Lagerheim).

— Cynodontis Henn. F. Afr. I. p. 369 (ut var.), Bref. Unters. XII. p. 105. t. VI.

In inflorescentia Cynodontis Dactyli in Abyssinia et India or.

— Paspali-dilatati P. Henn. ap. Bref. Unters. XII. p. 122. t. VII. In inflorescentia

Paspali dilatati in Brasilia (Möller).

— Arundinellae Bref. Unters. XII. p. 108. t. VI. In inflorescentia Arundinellae sp.

in India orient. (Cunningham!).

— Andropogonis-tuberculati Bref. Unters. XII. p. 108. t. VI. In inflorescentia An-

dropogonis tuberculati in India or. (Barclay).

— Ulei P. Henn. Fung. goyaz. p. 88. In foliis Chloridis sp. in Brasilia.

Neovossia Barclayana Bref. Unters. XII. p. 170. t. X. In fructibus Penniseti tri-

flori in India or. (Barclay).

Anthracoidea Bref. Unters. XII. p. 142 (nov. gen.) Affinis Ustilagini sed germinatio

aliena.

— subinclusa Bref. |. c. t. IX. fig. 1—3. In fructibus Caricum variarum ex g. C.

ripariae, C. vasicariac, C ampullaceae in Europa.

— Carieis (Pers.) Bref. I. c. t. IX. fig. 4—5. Ustilago Pers. In fructibus Caricum

variarum in Europa, India, Brasilia.

Cintractia caricicola P. Henn. Hedw. 1895. p. 325. In bracteis Caricis spatheae,

Transvaal.

— Krugiana P. Magn. — var. usambarensis P. IIenn. Pilze Östafr. p.48. In Rhyn-

chospora aurea in Africa tropica.

Tilletia zonata Bref. Unters. XII. p. 161. t. X. In floribus Sporoboli ligularis in

Aequatoria (Lagerheim).

— Sesleriae Juel Mycol. Beitr. II. p. 494. In foliis Sesleriae coeruleae, ubi strias

longas nigras efficit, in Gotlandia. Sporae 25—28 u diam., atro-brunneae,

tenuiter anguste reticulatae.

— ? irregularis Pazschke Hedw. 1895. p. (101). In foliis vivis Andropogonis sp.

in Brasilia.

Melanotaenium cingens Bref. Unters. XII. p.173. t. X. In surculis Linariae genisti-

foliae in Austria.

Entyloma Oleandrae P. Henn. Hedw. 1895. p. 326. In foliis Oleandrae articulatae,

Natal.

— arnicale E. et E. Nov. spec. Ust. Ured. p. 57. In foliis Arnicae cordifoliae,

Idaho America bor.

— Bidentis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 49. In foliis Bidentis pilosi in Africa

tropica.

— cissigena P. Henn. Pilze Ostafr. p. 49. In foliis Cissi in Africa tropica.

— Corydalis-Iuteae Voglino in Bull. Soc. bot. ital. 1896. p. 36. In foliis et caulibus

vicis Corydalis luteae, Canton Ticino, Helvetia.

Sirentyloma P. Henn. Hedw. 1895. p. 319. — Mycelium intercellulare; sporae catenu-

latae, dein secedentes, fuscae, episporio crasso, levi.

— Salaciae P. Henn. |. c. In foliis Salaciae sp. Goyaz Brasiliae.

Tolyposporium Penicillariae Bref. Unters. XII. p. 154. t. IX. In inflorescentia Peni-

cillariae spicatae in India or. (Barclay).

— Cenchri Bref. Unters. XII. p. 156. t. IX. In inflorescentia Cenchri echinati in

Brasilia (Möller).

— Volkensii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 49. In ovariis Sorghorum cultorum in

Africa tropica,

2,1

-1

580.

585.

590.

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— XXI —

Tolyposporium Chloridis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 49. In fructibus Chloridis

abyssinicae in Africa tropica.

— Anthistiriae Cobb ap. Mc. Alpine Arrang. Austral. Fungi p. 202. In inflores-

centia Anthistiriae ciliatae, N, South Wales, Australia.

Doassansia intermedia Morot in Journ. de bot. 1895. p. 471. In foliis Alimatis

ranunculoidis in Gallia.

— affinis Ell. et Dearn. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 364. In Sagittaria variabili,

Canada.

Sorosporium Holstii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 49. In inflorescentia Themedae For-

skolei in Africa tropica.

— maranguensis P. Henn. Pilze Ostafr, p. 49. In inflorescentia Andropogonis

lepidi in Africa tropica.

— ceuneatum Schofield in Webb. App. Cat. Fl. Nebr. 1892, Idem est ac posterius

S. Solidaginis EI. et Ev. — Syll. XI. p. 237 — editum anno 1893, Cfr.

Bull. Torr. Cl. 1895. p. 363,

Ustilaginoidea Bref. Unters. XII. p. 194 (nov. gen.) E promycelio oriuntur spori-

diola hyalina et conidia (tilletiacformia) pleurogena sessilia colorata.

Stirps vix ustilaginea.

— Oryzae (Pat.) Bref. |. c. p. 194. t. XI. fig. 22—33. Tilletia Oryzae Pat. In fruc-

tibus Oryzae in India or. et Japonia,

— Setariae Bref. |. c. p. 202. In inflorescentia Setariae Crucis-Ardeae in Brasilia.

Phycomyceteae De Bary.

Sacc. Syll. VII p. 181, IX p. 335, XI p. 239,

Fam. 1. Mucoraceae De Bary.

Phycomyces Pirottianus Morini in Malp. 1896. p. 89. tab. III. fig. 8-12. In stercore

equino, Messina Siciliae,

Dispira americana Thaxt. Bot. Gaz. 1895, p. 513. tab. XXXV. In stercore murino,

parasitica in Mucore. Ohio Amer. bor. Zygosporae describuntur, hinc

mucoracea species.

Thamnidium Arbuscula (Ötth) Sacc. Melidium Otth Bern. Mittheil, 1865. p. 172.

In crustis lichenum ad ligna faginea coacervata in Helvetia. Hyphae

stipitiformes, continuae, elatae, 0,5 mm alt., superne ramosae, rami alterni

patentes, repetito dichotomi, ramulis omnibus pariter in angulum circ.

grad. 120 divergentibus, dichotomiis regulari modo successive paullo

minus inter se distantibus; ramuli extrem. breves sporangia acrogena

gerentes, globosa, hyalina, sporis quaternis, ellipsoideis, vix coloratis foeta,

Fam. 2. Peronosporaceae De Bary.

Peronosporae Corollae Tranzschel Hedw. 1895. p. 214. In corollis Campanulae

persicifoliae pr. Nowgorod Rossiae.

— Alchemillae Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 65. In pag. inf. foliorum Alche-

millae vulgaris pr. Bern Helvetia. Hyphae quinquies dichotomae.

Conidia fuscidula 13 « diam. v. ellipsoidea ad 19 u longa. Oosporae

ignotae.

— cannabina Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 63. In pag. inf. foliorum Cannabis

sativae pr. Steffisburg Helvetia. Caspituli cinereo-violascentes. Hyphae

inaequaliter bis ter ramosae, ramulis divaricatis, Conidia_ cellipsoidea,

griseola. Oosporae ignotae,

— XXIII —

Peronospora Epilobii Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 63. In pag. infer. foliorum

Epilobii parviflori pr. Bern Helvetiae. Hyphae sat longae, sursum ramosae,

ramis alternis repetito-ramulosis apiceque 2—3 furcatis. Conidia globoso-

ellipsoidea 13—15 «u diam. v. usque 21 « long. Oosporae ignotae.

— Podagrariae Otth in Trog. Bern. Mittheil. 1857. p. 45. In pag. inf. foliorum

Aegopodii Podagrariae, Bern Helvetia. Videtur Plasmopara nivea.

— Whippleae Ell. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 364. In foliis Whippleae

modestae, California.

Fam. 3. Saprolegniaceae De Bary.

Monoblepharis insignis Thaxt. Bot. Gaz. 1895. p. 438. tab. XXIX. fig. 1—7. Ad

ramenta submersa in fossis et stagnis in America bor.

— fascieulata Thaxt. Bot. Gaz. 1895. p. 439. tab. XXIX. fig. 8—12. Ad ramenta

submersa in fossis et stagnis cum praecedente.

Gonapodya A. Fisch. Phycom. p. 327 et 382 cum icon. A gen. Monoblepharide

differt praecipue mycelii hyphis aequaliter constricto - moniliformibus.

— siliquaeformis (Reinsch) Thaxt. Bot. Gaz. 1895. p. 480. tab. XXXI fig. 6— 10.

Gonapodya prolifera A. Fisch., Saprolegnia siliquaeformis Reinsch. In fruc-

tibus putridis aqua immersis in Europa et America.

— polymorpha Thaxt. Bot. Gaz. 1895. p. 481. tab. XNXT. fig. 11—16. In ramulis

aqua submersis in Amer. bor.

Myrioblepharis Thaxt. Bot. Gaz. 1895. p. 482 (nov. gen.). Pythio subaffinis sed

zoosporae multiciliatae, magnae, e contentu sporangiorum divisione

oriundae etc.

— paradoxa Thaxt. |. c. tab. XXX. fig. 1—5. In ramentis aqua submersis in

America bor.

Fam. 4. Chytridiaceae De Bary et Wor.

Synchytrium Shuteriae P. Henn. Pilz. Ostafr. p. 30. In foliis Shuteriae africanae

in Africa trop.

— Johanssonii Juel Bidrag Skand. Synch. p. 246. In foliis Veronicae scutel-

latae in Jemtlandia. Sporae quiescentes 48—55 u diam, episporio fusco.

— Phegopteridis Juel Bidrag Skand. Synch. p. 246. In foliis Phegopteridis poly-

podiodis in Jemtlandia. Sporae 130—150 — 90, episporio vix fuscescente.,

— rugulosum Diet. Hedw. 1895. p. 292. In foliis caulibusque Onagraceae cujusdam,

California.

Astreptonema Hauptfleisch in Ber. d. Deutsch. Bot. Gesell. 1895. p. 83. c. tab.

Thallus non racemosus. Oosporae in quoque oogonio singulae pluri-

nucleatae, oblongae. Oogonia terminalia, superimposita seu catenulata.

— longisporum Hauptfl. 1. c. In tegumento Gammari Locustae in Germania.

Rhizophidium messanense Morini in Malp. 1896. p. 72, tab. III. fig. 1-4. In fila-

mentis cujusdam Cladophorae, Messina, Siciliae.

Pyrenomyceteae Fr. em.

Sacc. Syll. Fungi I p. 1, IX p. 364, XI p. 252.

Fam. 1. Perisporiaceae Fr.

Sphaerotheca tomentosa Otth Bern. Mittheil. 1865. p. 168. In pag. inf. foliorum

et caulibus Euphorbiae dulcis in Helvetia. Subiculum tomentosum, albidum.

Perithecia subimmersa, appendiculis rufis a subiculi hyphis vix distinctis.

Ascus unicus sporidiis octonis foetus.

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615.

620.

625.

630,

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— XXIV —

Monascus purpureus Went in Ann. Sc. nat. Bot. 1895. Sept. tab. I—II. In caryopsi-

dibus Oryzae coctis, quas fungillus rubro-tingit et ex quibus contritis

substantia tinctoria purpurea oritur, quam Sinenses Ang-Quac dicunt, lateque

fungilli cultura obtinent. — Genus, ut videtur, inter Eurotaceas et Thele-

boleas fere medium,

Eurotium semiimmersum El. March. Champ. copr. VII. p. 128. tab. II. fig. 3—3a.

In fimo suino putrido in Belgio.

Asterula? goyazensis P. Henn. Fungi goyaz. p. 104. In foliis coriaceis fruticis

ignoti in Brasilia.

Asterina calotheca Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 221. Ad folia arborum sp. in

Aequatoria.

— globifera EI. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 435. In foliis Grevilleae in ins.

Sandwich.

— Vochysiae P. Henn. Fungi goyaz. p. 103. In foliis Vochysiae sp. in Brasilia,

— Couepiae P. Henn. Fungi goyaz. p. 104. In foliis Couepiae sp. in Brasilia.

— Caricarum Rehm Hedw. 1895. p. (161). Ad folia viva Caricae, Millegalli,

Aequatoria.

Asteridium Illieii Tracy et Earle Miss. Fungi, 1895. p. 100. In foliis Ilicii floridani,

Mississippi.

— dothideoides Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 436. In foliis Andromedae

ferrugineae, Florida.

Asteronia Sweetiae P. Henn. Fungi goyaz. p. 104. In foliis Sweetiae sp. in Brasilia.

Dimerosporium Magnoliae Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p- 99. In foliis

Magnoliae glaucae, Mississippi.

— Englerianum P. Henn. Pilze Östafr. p. 31. In ramis, quos deformat, Ericinellae

Mannii in Africa tropica.

— Forsteroniae P. Henn. Fungi goyaz. p. 105. In foliis vivis Forsteroniae sp. in

Brasilia.

— $alaciae P. Henn. Fungi goyaz. p. 105. In foliis vivis Salaciae sp. in Brasilia.

— Elliotii Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot. 1895. p. 343. In foliis Ericae

arboreae in Alrica orient.

— Bosciae P. Henn. Fungi somal. p. 4. In foliis Bosciae somalensis, Somalia,

Africa.

Parodiella dothideoides Pat Bull. Soc. mycol. 1895. p. 221. In foliis Iresines in

Aequatoria.

— ceonsimilis P. Henn. Fungi goyaz. p. 106. In foliis coriaceis Myrtaceae cujus-

dam in Brasilia.

Argynna Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 41. (nov. gen.). Perithecia carbonacea,

subglobosa, demum reticulatim dehiscentia et hinc subpolyedra. Asci

(verisim. cito diflui). Sporidia fuliginea, 1-septata, subtrapeziiformia,

papilionem simulantia.

— polyedron (Schw.) Morg. 1. c. tab. II. fig. 14, Physarum polyedron Schw.

N. A. F. n. 2300. In ligno carioso Caryae, Ohio, Amer. bor.

Meliola acanthopoda Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 222. In foliis arboris ignotae

in Aequatoria.

— sandicensis E. et Ev. Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 434. In foliis Rubiaceae

cujusdam, Sandwich island.

— Didymopanacis P. Henn. Fung. goyaz. p. 106. In foliis Didymopanacis

sp., Minas Geraes Brasilia (Glaziou), — Perithecia 160--200 u diam, setis

subulatis 200—260 = 9—11. Asci 42—56 = 20—26, bispori; sporidia con-

stricto — 4-septata, 40—53 — 14—18, fusco-brunnea. Mycelium non seti-

gerum,

a 2: "3. Fa u a a ENT Pen. 2 u E N

— XXV —

Meliolopsis usambarensis Rehm in P. Henn. Pilze Ostafr. p. 31. In ramulis emor-

tuis in Africa tropica.

Ceratocarpia Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 1 (nov. gen.). Perithecia super-

ficialia, globosa, astoma, fusca, byssiseda. Asci octospori, aparaphysati,

ovati. Sporidia muriformia, colorata, utrinque appendiculata.

— Cactorum Roll. I. c. tab. I fig. 3. In spinis Cacti Opuntiae emortui, Golfe

Juan Galliae.

Capnodium melioloides Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 222. In foliis Urticaceae

cujusdam in Aequatoria.

— cerassum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 223. In foliis Melastomaceae cujusdam

in Aequatoria.

— Lygodesmiae EIl. et Ev. Proc. Acad. Philadelph. 1895. p. 414. Ad caules vivos

Lygodesmiae junceae, Colorado.

Fam. 2. Sphaeriaceae Fr.

Sect. 1 Allantosporae.

Calosphaeria occulta Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 96. In truncis Abietis excelsae

in Helvetia.

Valsa (Euvalsa) acericola Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 98. In ramis Aceris Pseudo-

platani in Helvetia. — Sporidia octona 16—26 = 3—4, flavida.

— — Platanoidis Otth (non Pers.) Bern. Mittheil. 1868. p. 97. In ramis Aceris

Platanoidis in Helvetia. — Sporidia 16—22 = 4—6, octona, hyalina.

— — Melanodiscus Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 97. In ramis Alni incanae in

Helvetia. — Sporidia 8S—11 — 4—5, hyalina.

— leucopsis Ell. et Ev. Proc. Acad. Phil. 1895. p. 425. In cortice Fraxini viridis ?

Nebrasca.

— brevis Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 210. In cortice Abietis balsameae,

Labrador.

Eutypella herbicola Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 426. In caule Asteris

cordifoliae, Ohio.

— Rosae Otth Bern. Mittheil. 1370. p. 97 (Valsa). In ramis emortuis Rosae caninae

in Helvetia. — Sporidia 10 = 2, hyalina.

— alpina Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 425. In truncis emortuis Alni

incanae, Colorado.

Cryptosphaeria juglandina Ellis et Holw. Bull. Hist. nat. Jowa 1895. p. 41. In

ramis emortuis Juglandis cinereae, Decorah Jowa Amer. bor. Stroma

effusum, corticola, perithecia 0,5—0,7, ostiolis obtusis; asci 110 u long.

60=10p.sp.; sporidia octona, allantoidea, 15—20 = 3,5—4,5 flavo-brunnea.

Eryptoralsa Coryli Voglino Bull. Soc. bot. Ital. 1896. p. 40. In ramis corticatis

Coryli Avellanae, Canton Ticino, Helvetia.

Diatrypella obseurata (Schw.) Ellis Pyren. Schwein. p. 8, Sphaeria Schw. (in herb.).

In ramis arboris cujusdam in Amer. bor. — Sporidia 5—6 = 1,2, flavida.

— Fraxini Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 426. In ramis emortuis Fraxini

viridis, Kansas.

Sect. 2. Phaeosporae.

Anthostoma simplex (Otth) Sacc., Quaternaria simplex (Otth) Nke, in Otth Bern.

Mittheil. 1870. p. 95. In ramis emortuis Tiliae in Helvetia. — Sporidia

26—30 —= 14, demum nigro-fusca.

— Ailanthi (Otth) Nke. in Otth Bern. Mittheil. 1870 p. 101. (Phaeosperma).

In ramis corticatis Ailanthi in Helvetia. Sporidia 12—14 — 4, fumosa,

ellipsoidea.

660.

665.

670.

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Ceratostoma albo-maculans E. et Ev. Proc. Acad. Phil. 1895. p. 418. In ligno

putri, Ohio.

— melaspermum E. et Ev. Proc. Acad. Philad. p. 417. In ligno putri, Ohio,

Rosellinia muriculata E. et Ev. Proc. Acad. Phil. 1895. p. 416. In cortice interiore

Populi moniliferae, Kansas.

— geasteroides E. et Ev. Proc. Acad. Phil, 1895. p. 415. In culmis dejectis Arun-

dinariae, Louisiana.

— poliosa Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 439. In ligno putri, Mexico.

— Chusqueae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 224. In truncis emortuis Chusqueae

in Aequatoria.

— rhodomela (Schw.) Ellis Pyren. Schwein. p. 3. In truncis in Amer. bor.

Sporidia ellipsoidea, 8—12 — 5—7, opaca. Perithecia tomento subroseo

tecta.

— imposita (Schw.) Ellis Pyren. Schwein. p. 4. In ramulis dejectis in Amer.

bor. — Sporidia 18—24 = 6—8, brunnea.

— elaeicola P. Henn. Fungi camer. I. p. 77. In foliorum vaginis putridis Elaeis

guineensis, Kamerun.

Sordaria clavata Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 226. In detritis putridis in Aequatoria,

— gregaria Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 49. In ligno putri pr. Bern, Helvetia,

— pruinincola Ötth Bern. Mittheil. 1868. p. 49. In cortice Fagi pr. Bern, Helvetia.

— elephantina P. Henn. Fungi camer. I. p. 77. In fimo elephantino, Kamerun.

Anthostomella Lambottiana Fautr. Rev. myc. 1895. p. 167. In trunco decorticato

Persicae vulgaris, Cöte-d’Or Galliae.,

— aziaca Sacc. et Flag. (mox edenda). In caule emortuo Hellebori foetidi,

Azc, Gallia.

— albocineta EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 424. In culmis emortuis ‘

Arundinariae, Louisiana.

Xylaria nutans P. Henn. Fungi camer. I. p. 79. In truncis emortuis, Kamerun,

— Telfairii (Berk.) Sacc. Syll. I. p. 320. — var, eamerunensis P. Henn. F, camer.,

I. p. 79. In truneis putridis, Kamerun,

— verruculosa P. Henn. Fungi camer. I, p. 78. In truncis, Kamerun.

— bidentata Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 87. Ad ligna putrescentia, Congo.

Hypoxylon ferrugineum Ötth. Bern. Mittheil. 1868. p. 41. In ramis emortuis Tiliae,

Bern Helvetiae. — Pulvinatum, ferrugineum, grumosum, intus obscurius.

Perithecia prominula, ostiolis minutissime papillatis. Asci cylindrici, 8-spori,

sporidia 13 = 7, nigricantia.

— Eriodendri P. Henn. Fungi camer. I. p. 78. In ramis emortuis Eriodendri

anfractuosi, Kamerun.

— cealifornieum Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 426. In ligno Adenostylis

fasciculati, California.

Kretzschmaria sessilis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 223. In trunco putri in

Aequatoria.

Pyrenomyxa Morg. New N. Am. Fungi, 1895. p. 42. (nov. gen.) Stromata pulvinata,

carbonacea, superne cellulas stipatas, cylindraceas monostichas tenui-

membranaceas, late inaequaliter apertas ferentia. Asci (jam resorpti?)

Sporidia allantoidea-navicularia, continua, brunnea.

— invocans Morg. I. c. tab. II fig. 15. In ligno indurato Caryae, Ohio Amer.

bor. An forma abnormis?

— XXVO —

Sect. 3. Hyalosporae.

Laestadia illicicola Tracy et Earle Miss. Fungi, 1895. p. 101. In foliis Illicii Nori-

dani, Mississippi.

— Calycotomes Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 3. tab. II. fig. 3. In ramulis siccis

Calycotomes spinosae, Golfe Juan Galliae.

— Cephalariae (Auersw.) Sacc. — var. Alternantherae Sacc. Fl. mycol. Lusit. App.

p-. 61. In foliis Alternantherae sessiliis, St. Thome.

Physalospora Molluginis (Ötth) Sacc. Stigmatea Molluginis Otth Bern. Mittheil.

1868. p. 57. In foliis caulibusque Galii Molluginis in Helvetia. — Sporidia

10= 2,5, hyalina.

— Corni E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 421. In ramis emortuis Corni,

Colorado.

— Jatitans Sacc. Fl. mycol. Lusit. p. 60. In foliis emortuis Eucalypti colosseae,

Coimbra Lusitaniae.

Trichosphaeria Sacchari Massec Syll. XI. p. 294. Sec. Massee stat. conid. est

Melanconii species, quac sec. Prill. et Delacroix est Coniothyrium melaspo-

rum (Berk.) Sacc. Cfr. Bull. Soc. myc. 1895. p. 80. tab. X.; sed reapse

perithecium abesse videtur, hinc species aptius Mel. melasporum esset

dicenda.

Wallrothiella conferta Sacc. et Flag. (mox edenda). In ligno emortuo Tamaricis

anglicae, Aze, Gallia.

Sect. 4. Hyalodidymae.

Sphaerella Menthae Lamb. et Fautr ‚Rev. mycol. 1895. p. 170. In caulibus siccis

Menthae silvestris, Cöte -d’Or, Gallia.

— Hystrix Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 170. In foliis Asprellae Hystricis cultae,

Cöte-d’Or, Gallia.

— Bonae-noctis Sacc. Fl. mycol. Lusit. App. p. 61. In foliis subvivis Ipomaeae

Bonae -noctis, St. Thome.

— Cruciatae Lamb. et Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 170. In caulibus siccis Galii

Cruciatae, Cöte-d’Or, Gallia.

— ambigua Fautr. et Lamb. Rev. mycol. 1895. p. 170. In caulibus siccis Cichorii

Intybi, Cöte-d’Or, Gallia.

— Nicotianae Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 420. In cortice vivo Nico-

tianae, California.

— vagans E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 421. In caule emortuo Valcrianae

silvaticae et Castillejae miniatae, Colorado.

— syringaecola Ötth Bern. Mittheil. 1870. p. 110. In foliis vivis Syringae vulgaris

in Helvetia.

— mazzantioides Sacc. (mox edenda). In sarmentis semimortuis Vitis viniferae,

Rigny, Gallia.

Didymella ailanthina Togn. Seconda contr. Micol. tosc. p. 5. In cortice

Ailanthi glandulosae in Etruria — Perithecia 225 « diam., ostiolo obtuso.

Asci 80—90 := 11; sporidia 16—18 = 7—9, constricto -1-septata, bi-

quadriguttata, hyalina.

— Bieini E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 421. In petiolis emortuis Ricini

communis, Louisiana.

Melanopsamma borealis EI. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 416. In cortice

interiore relaxato Abietis, Newfoundland.

Venturia cineinnata (Schw.) Fr. Summa p. 405, Ellis Not. pyren. Schwein. p. 1,

Sphaeria Schw. In foliis Vaccinii sp. in America bor,

710.

715.

720.

— XXVI —

Venturia nervincola Rehm Hedw. 1895. p. (162). In nervis foliorum Melastomatis Sp.,

S. Jorge Aequatoriae.

Gibbera camerunensis P. Henn. Fungi camer. 1. p. 77. In lignis putridis, Kamerun,

Diaporthe (Chorostate) pyenostoma ÖOtth Bern. Mittheil. 1870. p. 99. In ramis

corticatis Berberidis vulgaris in Helvetia. — Sporidia 16 = 6, subconstricto-

1-septata, 4-guttata, hyalina.

— — Padi Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 99. In ramis corticatis Pruni Padi in

Helvetia. — Sporidia constricto 1-septata, 14—16 — 5, hyalina, 2—4-guttata.

— — flavo-virens Ötth Bern. Mıttheil, 1868. p. 47. In ramis siccis Coryli, Bern,

Helvetia.

— — hyperopta Nits. in Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 47. In ramis siccis Carpini

pr. Bern, Helvetia,

— (Euporthe) cornicola Ellis et Holw. Bull. Hist. nat. Jowa 1895. p. 43. In

ramis majusculis emortuis Corni paniculatae, Decorah Jowa. Perithecia

0,5—0,7 mm diam. corticola, ostiolis breviter cylindraceis vix emergentibus;

asci 40-45 — 8, p. s.; sporidia octona 4-nucleata, hyalina, constricto-

1-septata, 10—12 = 3,5—4,5.

— (Tetrastaga) Otthii Nits. in Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 45. In ramis

emortuis Ulmi, Bern, Helvetia.

— — Flageoletiana Sacc. '\mox edenda). In ramis corticatis Calycanthi floridi

culti, Rigny, Gallia (Flageolet).

— — Mühlenbeckiae F. Tassi (mox cdend.). In caulibus siccis Mühlenbeckiae

complexae cultae in Italia.

Melanconis ? betulina Otth Bern. Mittheil. 1868. p- 43. In ramis corticatis Betulae

pubescentis in Helvetia. — Sporidia oblonga, obtusa, constricto-1-sep-

tata, fumosa, 15—16 — 6. Conidia non observata »An Melanconiella?«.

Endothia Nitschkei Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 48. In ramis emortuis Tiliae

grandifoliae pr. Bern, Helvetia.

Sect. 5. Phaeodidymae.

Didymosphaeria Ceitidis E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895, p. 421. In trunco

emortuo Celtidis occidentalis, Kansas.

— Cerasorum (Fr.) Sacc. *Did. padina Sacc. (mox edend.). In ramis corticatis

Pruni Padi pr. Rigny, Gallia.

— sphaerophora EIl. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 439. In Agave, Mexico.

— Bambusae Roll. Bull. Soc. myc. 1896. p- 4 tab. I. fig. 9. In culmis Bambusae,

Golfe Juan Galliae.

Amphisphaeria Papilla (Schw.) Ellis Not. Pyr. Schw. p. 4. Ad ligna putrida in

Amer. bor. .

— rhodella Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p.225. In cortice vetusto in Aequatoria.

— mobilis (Schw.) Ellis Pyren. Schwein. p. 7. Ad ligna putrida in Amer. bor. —

Sporidia 18—22 — 6—7, brunnea.

— pilosella E. et Ev. Proc. Acad. Phil. 1895. p. 418. In ligno dejecto arborum,

Ohio.

— confertissima E. et Ev. Proc. Acad. Phil. 1895, p. 418. In ligno aeri diu ex-

posito, Ohio.

Gaillardiella Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 226 (nov. gen.) Perithecia superficialia,

cupuliformia, membranacea, crasse cellulosa, rugosa, glabra, ostiolata. Asci

octospori; sporidia didyma, brunnea. Ad Hypocreaceas et Perisporiaceas

quoque vergit, teste auctore.

— pezizoides Pat. I. c. In fragmentis ligneis putridis dejectis in Aequatoria.

125.

730.

735.

740.

745.

a Fu L u a Fe 2 a a len 4. u 20 00a Da

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Melanconiella appendiculata (Ötth) Sacc. Diaporthe appendiculata Ötth Bern.

Mittheil. 1870. p. 100. In ramis corticatis Aceris Platanoides in Helvetia.

— Sporidia majuscula, umbrina, constricto -1 - septata, umbrina, 38 = 16,

utrinque obtuse appendiculata. Mel. acrocysti (Peck) certe peraffinis.

Valsaria pustulans Rehm Hedw. 1895. p. (165). In truncis Aceris campestris pr.

Zürich Helvetiae.

Sect. 6. Phaeophragmiae.

Leptosphaeria Menthae Fautr. et Lamb. Rev. myc. 1895. p. 169. In caulibus siccis

Menthae silvestris, Cöte-d’Or, Gallia.

— Galii (Ötth) Sacc. Pleospora Galii Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 56. In cauli-

bus Galiorum in Helvetia.

— coneinna Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 423. In caule emortuo Ca-

stilleiae miniatae, Colorado.

— lethalis Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad 1895. p. 423. In caule cmortuo Pen-

tastemonis conferti, Idaho.

— Chelidonii Kautr. Rev. mycol. 1895. p. 168. In caulibus siccis Chelidonii ma-

joris, Cöte-d’Or, Gallia.

— ceurta Sacc. et Flag. (mox edenda). In ramis emortuis Rhois typhinae, Rigny

Galliae.

— rimicola (Ötth) Sacc. Cladosphaeria (Krumpentes) rimicola Otth Bern.

Mittheil. 1870. p. 106. In ramis dejectis Pruni avium in Helvetia. — Sporidia

19—22 = 5—7, constricto -3-septata, fumoso-brunnea, disticha,

— Piperis P. Henm-Pilze Ostafr. p. 33. In foliis Piperis capensis in Africa tropica.

— iridigena Fautf. Rev. mycol. 1895. p. 168. In foliis siccis Iridis Pseudo-Acori,

Cöte-d’Or Galliae.

— iridieola Lamb. et Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 168. In foliis gelu tactis Iridis

foetidissimae, Cöte-d’Or Gralliae.

— Bambusae Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 4, tab. I. fig. 11. In culmis Bambusae,

Golf Juan Galliae.

— stellata Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 225. In truncis emortuis Chusqueae

in Aequatoria.

Pocosphaeria Chusqueae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 224. Ita vocenda Protoven-

turia Chusqueae Pat. (Syll. XI. p. 315) nam sporidia matura sunt 9-septata.

Ciypeosphaeria euphorbiicola P. Henn. Pilze Ostafr. p. 32. In cortice Euphor-

biacearum in Africa tropica.

Melanomma nigricans E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 417. In ligno putri, Ohio.

— boreale E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 416. In ligno aeri exposito,

Newfoundland.

— subeongruum E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 417.

moniliferae, Kansas.

— exile (Schw.) Ellis. Pyren. Schwein. p. 3. Ad truncos in America bor. —

Sporidia 3-septata, brunnea, 13—16 — 5—6.

Trematosphaeria astroidea (Fr.?) Ellis. Pyren. Schwein. p. 5. In ligno putri in

In cortice Populi

America bor. — Asci non visi, sporidia 3—4-septata, brunneola, 14—15

— 3-35.

— kilimandscharica P. Henn. Pilze Ostafr. p. 32. In cortice arborum in Africa

tropica.

— Schweinitzii E. et Ev. Pyren. Schwein. p. 6. In ramis Rubi sp. in America bor.

— Sporidia 19—22 = 5—6, brunnea, 3-septata.

— confertula (Schw.) Ellis. Pyren. Schwein. p. 6. In ligno putri in America bor,

— Sporidia 3-septata, brunnea 18—22 — 6—7.

-1

760.

76.

— XXX —

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Tremathosphaeria (Immersae) demersa Otth Bern, Mittheil. 1870. p. 108 (Clados-

phaeria). In ramis corticatis Lonicerae Xylostei in Helvetia — Sporidia

5-septata, brunnea, utrinque albida, 6-guttata, 45 — 11.

— elliptica (OÖtth) Sacc. Xylosphaeria elliptica Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 53.

In radicibus decorticatis Abietis, Weissenburg, Helvetia.

Pseudovalsa oceulta (Schw.) Ellis. Pyren. Schwein. p. 8. In ramis corticatis in

Amer. bor. — Sporidia biseriata, 3-septata, demum brunnea, 45—62 = 13-16.

Thyridaria rigniacensis Sacc. et Flag. (mox edenda). In ramis corticatis emortuis

Ulicis europaei, Rigny, Gallia.

Melogramma Egelingii Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 440. In foliis emortuis

Agaves, Mexico.

— boreale Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 426. In cortice Abietis emortuae,

Newfoundland.

— olivascens Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 100. In ramis dejectis Fagi in Helvetia.

— Sporidia fusoidea, curvula, 38—42 = 9, pallida, brunnea, 1-septata,

4- guttata.

— aesculinum Ötth Bern. Mittheil. 1870. p. 101. In ramis Aesculi Hippocastani

in Helvetia. — Sporidia 18 = 6, toruloso-3-septata, olivaceo -brunnea,

Sect. 7. Hyalophragmiae.

Metasphaeria (Immersae) fraxinicola Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 107 (Cladosphaeria).

In ramis corticatis Fraxini in Helvetia. — Sporidia toruloso-trilocularia,

hyalina, 17—20 = 6. »Verisimiliter Melomastiae spec.«

— eorylina Ellis et Holw. Bull. Hist. Nat. Jowa 1895. p. 43. In ramis emortuis

Coryli, Decorah Jowa Amer. bor. (Holway). — Peritheeia cta 0,5 mm diam.

ostiolo papillato perforante; asci tereti-clavatf 130—140 = 20, breve stipitati;

sporidia 25—30 — 10—11, leniter constricta, 3-septata, hyalina,

— quereina EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 423. In ramis emortuis

Quercus coccineae var. tinctoriae, New Jersey.

— Bambusae Roll. Bull. Soc. myc. 1896. p. 3. tab. IT. fig. 4. In cortice Bambusae,

Golfe Juan Galliae.

— Agaves Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 4. tab. II. fig. 6. In caulibus emortuis

Agaves, Antibes Galliae.

Charrinia Viala et Rav. Compt. rend. 1894, 20 aoüt, Zeitschr, für Pflanzenkrank,

1895. p. 116. — Perithecia sphaeroidea, late pertusa. Asci octospori, longe

paraphysati. Sporidia 1—3-septata, hyalina. St. pyen.: Coniothyrium Diplo-

diella.

Diplodiella Viala et Rav. I. c. In ramulis et racemis Vitis viniferae in

Gallia, cultura provecta. Sporidia 15 = 3—4; asci 56 « long. »Potius

Metasphaeria.«

Lasiosphaeria setosa (Schw.) Ellis Pyren. Schw. p. 2, Sphaeria Schwein. N. A. F.

n. 1533. In lignis putridis in Amer. bor.

— emergens (Schw.) Ellis Pyren. Schwein. p. 2, Sphaeria Schw., Syll. II. p. 405.

In lignis cariosis in Amer. bor. — Sporidia hyalina, 28—32 — 4, demum

probabiliter 3-septata.

Acanthostigma Chusqueae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 226. In truneis putridis

Chusqueae in Acquatoria.

— scopulorum E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 414. In caulibus emortuis

Ligustici scopulorum, Colorado.

Herpotrichia purpurea EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 415. ° In culmis

emortuis et foliis Deyeuxiae Suksdorfii, Washington.

— S$chiedermayriana Fuck. — var caldariorum P. Henn. in Hedw. 1895. p, (102).

In corbibus pineis in caldariis, Berlin.

Massarina eburnella Sacc. (mox edenda). In ramis Carpini Betuli corticatis,

Rigny Galliae.

Calospora apatela (Ellis-et Holw.) Sacc., Valsa E. et Holw. Bull, Hist. Nat. Jowa

1895. p. 42. In ramis Caryae emortuis, Decorah Jowa Amer. bor. —

Perithecia 6—10 in quoque stromate circinantia, 0,3—0,4 mm diam., ostiolis

4-sulcatis; asci 75—80 = 14— 16; sporidia 25>—40 = 6—8, fusoidea, 4-nucleata,

dein constricto-3-septata, hyalina.

Holstiella P. Henn. Pilze Ostafr. p. 33. Calosporae affınis sed stromata super-

ficialia et ostiola dein umbilicata.

— usambarensis P. Henn. I. c. In ramis arboris cujusdam in Africa tropica.

Sect. 8. Phaeodictyae,

Pleospora coloradensis Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 422. In caule

emortuo Polemonii conferti, Colorado,

— juncicola Elli. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 422. In calamo emortuo

Junei baltici, Colorado.

Teichospora (Strickeria) jungermannicola C. Massal. Due nuov. piren. epaticicol.

p. 5. t. IH. fig. 1. In foliis vivis Jungermanniae Flörkei pr. Lugano in

Helvetia italica.

— nitida E. et Ev. Proc. Acad. Phil. 1895. p. 419. In truncis emortuis Rubi

deliciosi, Colorado

— tenacella (Schw.) Ellis Pyen. Schw. p. 6. Sphaeria Schw., Syll. II. p. 421.

In ramis tenellis in Amer. bor.

— minima E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 419. In ligno quercino, Kansas.

Cucurbitaria subcaespitosa Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 103. In ramis Sorbi Ariac

in Helvetia. — Sporidia 22 = 8, 4—6-septato-muriformia, fusco-flliginea.

— stenocarpa E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 420. In ramis emortuis

Rhois diversilobae, California.

Thyridium asserculorum (Otth) Sacc. Nylosphaeria asserculorum Otth Bern. Mit-

theil. 1870. p. 104. In ligno pinco (asserculis) pr. Bern, Helvetia. — Sporidia

44—48 = 16—19, crebre clathrato -septata, fusco-brunnea.

— pallidum EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 424. In ramis emortuis Rhois

glabrae, Kansas.

Fenestella Robiniae Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 100 (Thyridium). In ramis

Robiniae in Helvetia. — Sporidia monosticha, fuliginea, 22—28 — 11—13,

ellipsoidea, 7-septato - muralia.

Sect. 9. Scolecosporae.

Ophiobolus Helianthi Ell ct Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 423. In caule emortuo

Helianthi Maximilianı, Kansas.

— herbarum (Ötth) Sacc. Rhaphidophora herbarum Ötth Bern. Mittheil. 1868.

p. 55. In caulibus Galii Molluginis et Isatidis tinctoriae in Helvetia. —

Ostiolumteres erumpens. Sporidia filiformia, fuscidula, tenuiter multiseptata.

— purpureus EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 424. In caulibus emortuis

Umbelliferarum, Colorado.

Vialaea Sacc. (nov. gen. mox edend.). — Stroma valseum, pustulatum; perithecia

plura ostiolis breviusculis, vıx convergentibus. Asci elongati octospori

aparaphysati; sporidia praelonga, bifusoidea, h. e. utrinque acuta, medio

angustata 1-septata, hyalina.

Vialaea insculpta (Fr.? Oudem.!) Sacc. Sphaeria Oud. Mat. mycol. Neerl. II. (1874)

p. 63. t. VI. fig. 9! Zignoella? insculpta Sacc. Syll. II. p. 225. (ex charact.

Friesianis). In ramis corticatis emortuis llicis Aquifolii, Rigny Galliae

(Flageolet) et in Neerlandia (Oudemans).

795.

800.

805.

810.

— XXXI —

Fam. 3. Hypocreaceae De Not.

Nectriella Lophocoleae €. Massal. Due nuovi pirenom, epaticicol. p. 7. t. II. fig. 2.

In foliis vivis Lophocoleae cuspidatae in Alp. Apuane, Italia.

Chilonectria flavovirens (Ötth) Sacc. Nectria (Cosmaria) flavovirens Otth. Bern.

Mittheil. 1868. p. 57. In ramis tenuibus Aceris Pseudoplatani in Helvetia. —

Asci clavati myriospori; sporidia 3=1, hyalina.

Sphaeroderma damnosum Sacc. in Berlese Rivista Pat. veget. 1895, n. 1-6, tab.

VNI—VII Ad basim culmorum, intra vaginas, Tritici sativi, quod late

necat, Cagliari (Prof. Sante Cettolini).

— affine Sacc. et Fl. (mox edendum). In ligno fagineo putri udo, Rigny, Gallia.

Hypomyces? epimyces (Otth) Sacc. Sphacria (Obturata?) epimyces Ötth Bern.

Mittheil. 1865. p. 166. In Corticio comedente ad ramos Quercus pr.

Steffisburg, Helvetia. — Perithecia minuta, subgregaria, globosa, nigra,

emergentia, demum seminuda v. subsuperficialia, ostiolo papillulato. Asci

cylindracei, octospori. Sporidia monosticha, ellipsoideo-rotundata, fusca,

continua, 10—= 8. Adest simul Sphaeronoma (Zythia) epimyces (Fr.) Berk.,

statum pyenidicum sistens, teste Otth,

Nectria alba Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 227. In truncis putridis Chusqueae in

Aequatoria.

— pertusa Pat. Bull. Soc. mycol. 1895, p. 227. In truncis Chusqueae in Aequatoria.

— subinsularis Pat. Bull. Soc.mycol. 1895. p.227. In truncis Chusqueae in Aequatoria,

— meliolopsicola P. Henn. Pilze OÖstafr. p. 32. In Meliolopside usambarensi in

Africa tropica.

— Turfaeae P. Henn. Fungi camer. I. p.75. Ad ramos vivos Turracae Volkensii,

Kilimandscharo, Africa.

— Jungneri P. Henn. Fungi camer. I. p. 75. Ad ramos, Kamerun.

— fuscostoma Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot. 1895. p. 343. In vaginis

Bambusarum in Africa orient.

— moschata Glück Hedw. 1895. p. 254. Ex mycelio Fusarii aquaeductuum culta,

Halle, Germania. — Ejusdem Fusarii status ascophorus.

— kermesina Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 109. In ramis Tiliae in Helvetia. —

Sporidia 14—18 = 5—6,5, hyalina.

— Opuntiae Roll. Bull. Soc. myc. 1896. p. 5. tab. I. fig. 2. Ad fibras Opuntiae

pr. Vallauris Galliae merid.

Corallomyces elegans Berk. et C. — var. camerunensis P. Henn. Fungi camer. I.

p- 76. In lignis putrescentibus, Kamerun.

Valsonectria andina Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 227. In ramis emortuis Coriariae

thymifoliae in Aequatoria.

Hypocrea? Euphorbiae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895, p. 228. In truncis emortuis

Euphorbiae in Aequatoria.

— rhizinaeformis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 88. tab. XI. fig. 5. Ad truncos,

Congo.

— Cornu-damae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 198. tab. XII. fig. 1. In lignis

putridis, Thibet orient.

— alba Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot. 1895. p. 343. Ad ramos siccos

in Africa orient.

Letendraea luteola Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 415. In ligno putre-

scente, Ohio.

Calonectria verrucosa Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 228. In truncis putridis

Chusqueae in Aequatoria.

81!

820

825

830.

835.

— XXXII —

Calonectria (Chiajaca) Hippocastani (Otth) Sacc. Nectria (Gibbera) Hippocastani

Otth Bern. Mittheil. 1868. p.57. In ramis Hippocastani in Helvetia. — Sub-

' genus, quod a cl. phycologo neapolitano Delle Chiaje Chiajaeam voco,

dignoscitur sporidiis 3-septatis brunneis.

Lisea violacea (Lorr. Sm.) Sacc. Gibberella violacea Annie Lorrain Smith Journ.

of Bot. 1895. p. 243. Ad cortices in Africa orientali.

Gibberella Lagerheimii Rehm Hedw. 1895. p. (163). Ad folia viva Tessariae sp.,

Pichincha Aequatoriae,

Broomella Lagerheimi Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 229. In foliis Bambusaceae

»moya« dictae in Aequatoria.

Balansia Jungneri P. Henn. Fungi camer. I. p. 76. In ovariis Panici sp., Kamerun.

Cordyceps? Cusu Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 229. In larva Coleopteri cujusdam

ad terram in Aequatoria,

Epichloe Volkensii P. Henn. Pilze Östafr. p. 32. In vaginis Andropogonis exotheci

in Africa tropica.

— Schumanniana P. Henn. Pilze Ostafr. p. 32. In glumis Andropogonis spec. e

sect. Schizachyrii in Africa tropica.

— Oplismeni P. Henn. Fungi camer. I. p. 76. In foliis deformatis Oplismeni,

Kamerun.

Fam. 4 Dothideaceae Nits.

Phyllachora crotonicola P. Henn. Hedw. 1895. p. 322. In foliis Crotonis sp. in

Brasilia.

— Plantaginis Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 427. In foliis Plantaginis

Rügelii, Wisconsin.

— ? Yuceae EIl. et Ev. Bull, Torr,. Cl. 1895. p. 440. In Yucca angustifolia, Mexico.

-— Desmodii P. Henn. Pilze Ostafr. p. 34. In foliis Desmodii Scalpe in Africa

tropica.

— Hieronymi P. Henn. Pilze Östafr. p. 34. In foliis Cyatheae Dregei in Africa

tropica.

— scanica Starbäk et Rehm in Hedw. 1895. p. (162). In foliis graminum in

Scandinavia.

Dothidella Adenocalymmatis P. Henn. Hedw. 1895. p. 323. In foliis Adenocalymmatis

paulistarum in Brasilia.

— longissima (Pers.) EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 427. Sphaeria

longissima Pers. Syn. p. 31. cfr. Syll. III p. 125. In caule emortuo

Chenopodii albi, Kansas,

— effusa Annie Lorrain Smith. in Journ. of Bot. 1895. p. 343. Ad folia As-

clepiadis in Africa orient.

— Osyridis (Cooke) B. et V.* D. Tassiana Sacc. (mox edend.). In foliis Pappeae

capensis ex Africa austr.,

Seirrhia lophodermioides Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 435. In culmis

emortuis graminum in insula Sandwich,

Dothidea Emmoti P. Henn. Hedw. 1895. p. 323. In foliis Emmoti nitentis in

Brasilia.

— fornieulata Otth Bern. Mittheil. 1870. p. 102. In ramis Mori albae in horto

bot., Bern, Helvetia. — Asci clavati; sporidia 19 = 6, inaequaliter bilocularia,

flavida.

Plowrightia irregularis (OÖtth) Sacc. Dothidea irregularis Otth Bern, Mittheil. 1870.

p. 104. In ramis Ribis floridi in horto bot., Bern, Helvetia. Sporidia

19—22 — 8, bilocularia, hyalina, loculo sup. multo majore. »An forma

P. ribesia?«.

HHedwigia Bd, AXAV. 18906. 3

Er 2 ee Bl Ze 3 uni) Ale ei. ner Bi en ne

840.

845.

850.

— XXX —

Homostegia coscinodisca Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 427. In cortice

Betulae, Newfoundland.

Myriogenospora Atkins. Bull. Torr. Cl. 1894, p. 225 (nov. gen.). Stroma effusum,

carbonaceum, pulvinatum; perithecia immersa, cum stromate confluentia,

vix prominula. Asci cylindracei polyspori,; sporidia elongata, continua,

hyalina.

— Paspali Atkins. I. c. In culmis juvenilibus Paspali levis in America bor. —

Sporidia fusoidea 15—25 = 5—8.

Ophiodothis (Dothichloä) Aristidae Atk. Bull. Torr. Cl. 1894. p. 224. In culmis,

quos interdum ambitl, Aristidae purpurascentis in Amer. bor. — Pro hac

specie et pro Hypocrella Hypoxylo (= Ophiodothis vorax) cl. Atkinson

condidit genus Dothichlo@. Cfr. I. c. ubi et Hypocrella tuberiformis in

nov. gen, Echinodothis erigitur.

Fam. 5. Microthyriaceae Sacc.

Myocopron fecundum Sacc. Fl. mycol. Lusit. App. p. 62. In foliis subvivis Crateri-

spermi, St. Thome£.

Microthyrium concatenatum Rehm. Hedw. 1895. p. (102). In foliis Myrtaceae cujusdam

in Brasilia.

— Jochromatis Rehm Hedw. 1895. p. (162). In foliis Jochromatis macrocalycis,

Millegalli Aequatoriae.

Heterochlamys Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 231 (nov. gen.). Stroma membrana-

ceum, dimidiato-scutatum, pluri-pertuso-ostiolatum, microthyriaceum;

perithecia hypostromatica, contextu atro coriaceo sphaeriaceo. Asci octo-

spori; sporidia 3-septata, hyalina — A Polystomella sporidiis diversis

recedit.

— (Chusqueae Pat. I. c. In foliis vivis Chusqueae in Aequatoria.

Seynesia rimosa Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 230. In foliis non determinatis

in Aequatoria.

— diseiformis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 230. In foliis arboris ignotae in

Aequatoria,

— Balansae Speg. — var. Ildefonsia. Rehm Hedw. 1895. p. (101). In foliis vivis

Ildefonsiae bibracteatae in Brasilia.

Micropeltis Leoniae P. Henn. Hedw. 1895. p. 323. In foliis Leoniae glycycarpae in

Peruvia.

Fam. 6. Lophiostomaceae Sacc.

Lophiostoma tingens (Schw.). Ellis Pyren. Schw. p. 7, Sphaeria Schw., Syll. II.

p. 411. In ligno decorticato Lauri Sassafras in Amer. bor. — Asci

110—120 = 15—18, sporidia 4—6-septata, demum brunnea 22—30 = 6—7.

— ambiguum Ötth Bern. Mittheil. 1868. p. 54. In ramis emortuis Crataegi in

Helvetia. — Sporidia 3-septata-torulosa, 4-guttata, olivaceo -brunnea,

16—18 — 6.

— dakotense EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 42. In truncis decorticatis

Populi moniliferae, Dakota. — An Lophiotrema?

— clavisporum E. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 419. In culmis Elymi cana-

densis, Kansas.

Lophiotrema Dominiei Sacc. (mox edend.). In culmis Phragmitis communis, in

Italia bor.

— Phaenicis Roll. Bull. Soc. myc. 1896. p. 5. tab. I, fig. 5. In caudice Phaenicis,

Golfe Juan Galliae.

800,

865,

870.

875.

ae un gan u ee. > ae en u En en 5

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Fam. 7. Hysteriaceae Corda.

Lembosia Prinoides Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 104. In foliis Ilicis

coriaceae, Mississippi.

— angustiformis Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 104. In foliis Ilicis

coriaceae, Mississippi.

— illicicola Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 104. In foliis Illicii floridani,

Mississippi.

— quereina (Ell. et Mart.) Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 105. Aulo-

graphum E. et M. — In foliis Quercus virentis, Mississippi.

Pseudographis Volkensii P. Henn. Fungi camer I. p. 80. In ramis vivis Turraeae

Volkensii, Kilimandscharo, Africa.

Gloniopsis larigna Lamb. et Fautr. Rev. myc. 1895. p. 168. In ramulis Laricis

europacae, Cöte-d’Or, Gallia.

Hypoderma Ericae Tubeuf Bot. Centralbl. 1885. p. 15, Rehm Disc. p. 1211. In

foliis Ericae carneae in Tirolia.

— Strobi Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 41. In ramulis siccis Pini Strobi,

’ Bremgartenwald, Helvetia. — Ascomata nigro-fusca, recta v.incurva, margine

introflexo, intus atra. Asci clavati, 8-spori. a acicularia, 40 = 2,

sursum obtusata.

Lophodermium Gentianae Voglino Bull. Soc. bot. Ital. 1896. p. 41. In foliis Gentianae

asclepiadeae, Canton Ticino Helvetiae.

Lophium Eriophori P. Hennings Myk. Not. I (1895) p. 2. In foliis Eriophori

vaginati in Grunewald, Germania. — Perithecia conchiformia, 0,5—0,8 =

0,3—0,5 mm rima long. dehiscentia, levia; asci 180—220 = 12—14; sporidia

filiformia, pluriguttulato - septata, hyalina, 100—130 u longa.

Ostropa virens Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 55. In ramis Pruni spinosae, P. avium

et P. Padi in Helvetia. — Perithecia viridula, rimoso-dehiscentia. Sporidia

filiformia, hyalina, creberrime septata.

Discomyceteae Fr.

Sacc. Syll. Fungi VII p. 3, X p. 1, XI p. 391.

Fam. 1. Helvellaceae Sw.

Helvella (Leptopodia) alpestris Boud. Bull. Soc. bot. Fr. 1894 p. CCXL. In

declivibus herbidis, Zermatt, Helvetia.

Verpa Sauteri Rehm. Disc. p. 1199, V. pusilla Saut. Ad ligna, Salzburg.

Gyromitra brunnea Unterwood Proc. Indiana Acad. 1893. p. 33. Ad terram

humosam, umbrosam, Indiana Amer. bor. — Edulis.

Mieroglossum lutescens Bond. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 14. tab. IV. fig. I. In

argilloso -sabulosis silvaticis, Montmorency Galliae.

Mitrula roseola Morg. New N. Am. Fungi p. 42. tab. III. fig. 16. In sabulosis,

Columbia, Amer. bor.,

Leptoglossum latum Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 210. In arenosis Labrador.

Fam. 2. Pezizaceae Fr.

Peziza quitensis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 216 (Aleuria). In muro udo, Quito

Aequatoriae.

Discina? submembranacea P. Henn. Hedw. 1895. p. 327. Ad terram arenosam,

Transvaal.

880,

885.

890.

895.

— XXXVI —

Lachnea maranguensis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 31. Ad terram udam gregatim

in Africa trop.

— nivalis Boud. Bull. Soc. bot. Fr. 1894 p. CCOXXXIX (Ciliaria). In pascuis alpinis

ad fimum vaccinum, Simplon.

— Jungneri P. Henn. Fungi camer. I. p. 74. Ad ligna putrida, Kamerun,

— bieuspis Bond. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 11. tab. III. fig. I. (Ciliaria). Ad

terram glareosam silvaticam Montmorency Galliae.

Humaria rubens Boud. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 13. tab, II. fig. III. Ad terram

arenosam muscosam, Bois de Beauchamp Galliae.

Detonia nigrans Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 43. tab. III. fig. 17 (Peziza).

Ad terram ustam, Ohio Amer. bor,

Barlaea (Leptopeza) fuscobadia Otth Bern. Mittheil, 1870 p- 94. Ad terram

arenosam in Helvetia. — Sporidia echinulata, globosa, 13 « diam. — Genus

Leptopeza Ötth, si genuinum, distinguitur a typo Barlacae ascomatibus,

discoideis, bilobis, excipulo nullo.

Neottiella Hetieri Boud. Bull. Soc. mycol. 1896, p. 12. tab. II. fig. II. In montibus

Jurae ad terram adustam (Hetier).

Ciboria Liquidambaris Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p: 428. In capsulis

dejectis Liquidambaris, Delaware,

Helotium aurantiacum P. Henn. Fungi camer. I. p. 73. Ad truncos et petiolos

filicum, Kamerun.

— eamerunense P. Henn. Yung. camer. I. p. 73. Ad ramos putres, Kamerun.

— flexuosum Massce British Fungi IV. p. 263. In culmis graminum, e. g. Dacty-

lidis in Britannia.

— spathicola P. Henn. Fungi camer. I. p. 74. In vaginis putridis foliorum,

Kamerun.

Chlorospienium striisporum Ell. et Dearness Proc. Acad. Philad. 1895. p. 429, In

foliis dejectis, Canada.

Duplicaria acuminata Ell. et Ev. Proc. Acad, Philad. 1895. p- 429. In calamis

Junci Drummondi, Colorado.

Pezizella pseudopezizoides Rehm Disc. p. 1231. In foliis dejectis Euphorbiae dulcis

in Germania.

— albo-nivea Rehm Disc. p. 1231. In foliis siccis Robiniae macrophyllae in

Germania.

— anonyma Rehm Hedw. 1895 p. (165). In stromate Auerswaldiae (Valsariae)

Baccharidis parasitica in Aequatoria.

—? Lyonsiae Cobb. in Mc Alp. Arrang. Austral. Fungi p. 200 (Peziza). In foliis

Lyonsiae reticulatae, N. South Wales Australiae.

Mollisia Asclepiadis Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 428. In caule emortuo

Asclepiadis, Canada.

Pirottaea (Mancinia) setulosa (M.etC.) Sacc. Echinella setulosa Massce et Crossl.

British Fung. IV. p. 305. In ramis decorticatis vetustis Callunae vulgaris

in Britannia. Genus Echinella et quia jam usurpatum et quia supra typum

primarium Pirottaeae exstructum, non accipiendum.

— Crosslandi (Massee) Sacc. Echinella Crosslandi Massce British Fung. IV. p. 36.

In ligno decorticato in Britannia.

Dasyscypha secintillans Massee British Fung. IV. p. 328. In foliis emortuis quercinis

in Britannia,

— Soppittii Massee British Fung. IV. p. 330. In foliis emortuis dejectis quercinis

in Britannia,

Trichopeziza Fraxini Boud. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 15. tab. IV, fig. III. In

ramis decorticatis Fraxini excelsioris, Montmorency Galliae,

900,

910.

915.

920.

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— XXXVOI —

Biatorella miecrohaema Norm., Rehm Disc. p. 1222. Ad ligna in Tirolia.

Velutaria subsessilis Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot. 1895. p. 340. In cor-

ticibus vetustis in Africa orient.

Phaeopezia splendens Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 219. Ad ligna putrida in

Aequatoria._

Niptera turicensis Rehm Disc. p. 1227. In foliis siccis Juniperi Sabinae in Helvetia.

— Nitschkei (Körb.) Rehm Disc. p. 561. Nesolechia Körb. In thallo Thelo-

trematis lepadini in Germania.

— Lagerheimi Pat. Bull.Soc. mycol. 1895. p. 216. In truncis Chusqueae in Aequatoria.

Helotiella herpotrichoides Rehm Hedw. 1891. p. (161). In pagina inferiore foliorum

viventium Gunnerae, San Jorge Aequatoriae.

Belonidium Chusqueae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 217. In truncis emortuis

Chusqueae in Aequatoria.,

— microscopieum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 217. In mycelio Perisporiaceae

cujusdam ad folia arborum, Acquatoria.

— andinum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 217. Ad ligna putrida, Aequatoria.

— Schnablianum Rehm Disc. p. 1228. In ramis decorticatis Lonicerae nigrae in

Bavaria.

— pulvinatum Boud. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 14. tab. IV. fig. II. In calamis

putridis Junci capitati, Montmorency Galliae.

Belonium Wagnerianum Rehm Disc. p. 1230 (Beloniella). In Opuntia Rafinesquiana

culta, putrescente, Schmilka, Germania (Wagner).

— orbilioides Rehm Disc. p. 1232. In caulibus siccis Umbelliferarum in Helvetia. —

Sporidia 1-septata, 15—17 = 3,5—4. »An Niptera?«

Solenopezia tetraspora P. Henn. Pilze Östafr. p. 30. In thallo Physciae integratae

in Africa trop.

Erinella viridula Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 218. In ramulis emortuis in

Aequatoria.

Pocillum Needhami Massee et Crossl. British Fung. IV. p. 498. In foliis dejectis,

Salicis capreae (?) in Britannia.

Fam. 3. Ascobolaceae Boud.

Ascobolus roseo-purpurascens Rehm Disc. p. 1122. In fimo cervino in Saxonia.

— Winterii Rehm Disc. p. 1124. In stercore anserino in Germania. Var. mancus

Rehm Disc. I. c. In stercore Cuniculi in Germania.

Boudierella Sacc. in March. Champ. copr. VII. p. 130 (nov. gen.). Ab affıni Bou-

diera recedit sporidiis hyalinis, quaternis, ascis longitrorsus dehiscentibus.

— cana March. I. c. p. 131. t. I. fig. 4. In fimo vulpino in Arduennis,

Fam. 4 Dermateaceae Fr.

Dermatea olivacea Otth Bern. Mittheil. 1868. p. 40. In ramis siccis Pruni avium

in Helvetia. — Ascomata flavo-fulvida, disco glauco-olivascente. Asci clavati,

8-spori. Sporidia 16—18 = 5—6, subhyalina, 4-guttata; paraphyses lineares

diluta flavidae.

— Pini Otth Bern, Mittheil. 1868. p. 40. In truncis Abietis excelsae dejectis pr.

Steffisburg Helvetiae. — Ascoma subpiriformia, atra, cartilaginea, caespitose

erumpentia, disco explanato-cavo. Asci anguste clavati, paraphysati; spo-

ridia.... . (immatura visa). — Status pycnidicus 1. c. describitur.

— Betulae Rehm Disc. p. 1221. In cortice Betulae et Juniperi in Germania.

Cenangium rosaceum Rehm Disc. p. 1220. In ramulis siccis Hippophaös rham-

noidis in Helvetia.

935.

940,

945.

— XXXVI —

Genangium conglobatum EI. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895, p. 428. In ramis

emortuis arborum et fruticum, Newfoundland.

— australe Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 219. In lignis putridis in Aequatoria.

— biparasiticum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 219. In peritheciis Perisporiaceae

cujusdam ad folia arborum in Aequatoria.

— abietina Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 429. In cortice Abietis

emortuae, Newfoundland.

Scleroderris Spiraeae Rehm Disc. p. 1220. In ramulis siccis Spiracae ariifoliae in

Germania.

— coerulea Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 220. Ad ramos corticatos putres in

Aequatoria.

— rubra Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 43. tab. III. fig. 18. In ramis

emortuis Asiminae trilobae, Ohio Amer bor,

Fam. 5. Bulgariaceae Fr.

Ombrophila subsqualida Rehm Disc. p. 1226. In foliis putridis Alni glutinosae et

Populi tremulae in Germania,

— dermatoides Rehm Disc. p. 1226. In foliis putrescentibus Salicum in Germania,

Orbilia flavido-roseola Rehm Disc. p. 1224. In caulibus siccis Vincetoxici offici-

nalis in Germania,

— andina Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 218. In truncis putridis Chusqueae in

Aequatoria.

Calloria trichorosella Rehm Disc. p. 1225. In caulibus siceis Cirsii spinosissimi

in alpibus, Helvetia,

Fam. 6. Stictidaceae Fr.

Ocellaria succinea Massce British Fung. IV. p.83. In cortice faginco in Britannia.

Propolis viridis Duf. ap. Roll. Bull. Soc. mycol.- 1896. p. 1. tab, I. fig. 1. Ad

radices Ericae arboreae etc. pr. Cannes Galliae.

Naevia Belladonnae Rehm Disc. p. 1216. In caulibus siccis Atropae Belladonnae

in Germania. ’

Phragmonaevia Chaerophylli Rehm Disc. p. 1218. In caulibus siceis Chaerophylli

aromatici in Saxonia.

Stietis corticioides Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 220. Ad ligna putrida Aequa-

toriae.

— Rubiacearum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 220. In foliis Rubiaceae cujusdam

in Aequatoria.

Melittosporium lichenicolum (Mont.) Massee British Fung. IV, p. 88. Stictis Mont.

In thallo Cladoniae pyxidatae etc. in Britannia.

Schizoxylon andinum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 220. Ad fragmenta dejecta

in Aequatoria.

Fam. 7. Phacidiaceae Fr.

Phacidium Populi Lasch, Rehm Disc. p. 1212. In foliis putridis Populi in Ger-

mania. — Dubia species.

Pseudopeziza Kriegeriana Rehm Disc. p. 1229. In frondibus putrescentibus

Struthiopteridis germanicae in Helvetia saxonica.

Trochila Astragali Rehm Disc. p. 1215. In caulibus siccis Astragali glycyphylli in

Germania.

Coceconia kilimandscharica P. Henn. Pilze Östafr. p. 31. In foliis et inflorescentia

Mayepeae Gilgianae, Kilimandscharo, Africa.

a a el ”“ wi ur a A a waehrend ni u ie a rt Bi " aut, an Bin 2. Mn EEE El Zug >,

N f

950.

955.

960.

970.

— XXXIX —

Fam. 8. Patellariaceae Fr.

Patellea hysterioides EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 429. In ligno pineo

aeri diu exposito, Kansas.

Pseudophaeidium necans Rehm. Disc. p. 1213. In ramulis siccis Coryli Avellanae,

Corni sanguineae et Pruni spinosae in Helvetia.

— Hellebori Rehm Disc. p. 1214. In foliis Hellebori altifolii in Carniolia.

— Couepiae P. Henn. Hedw. 1895. p. 324. In foliis Couepiae formosanae in

Brasilia.

Karschia Taveliana Rehm. Disc. p. 1223. Ad ligna putrida in Helvetia.

— tegularum (Arnold) Rehm. Disc. p. 1223. In thallo Blasteniae arenariae in tegulis

in Bavaria,

_> fulvo-disca Pat. Bull. Soc.mycol.1895.p.218. In corticibus arborum Aequatoriae.

Blitrydium Puncetum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 87. In cortice Tamarindi in

Aegypto.

Fam. 9. Gymnoascaceae Bar.

Exoascus acerinus Eliasson Taphr. acerin. Stockholm 1895. p. 3, cum tab. In

foliis Aceris Platanoidis pr. Upsala, Suecia.

Fam. 10. Phymatosphaeriaceae Spag.

Ascomycetella quitensis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 231. In foliis Cordiaceae

cujusdam in Aequatoria. (= Henningsiella quitensis Rehm [nov. gen.

Hedwig. 1895 p. (160).)

Tuberoideae Vitt.

Sacc. Syll. Fung. VIII p. 868, Xp. 80, XI p. 441.

Terfezia Goffartii Chat. Compt. rend. 1895, 1 juill. Ad terram sabulosam, Tanger

(J. Goffart). — Sporidia aculeata, dilute colorata, 25 « diam. (sine aculeis).

— Hänotauxii Chat. Compt. rend. 1895. 18 nov. Ad terram Teheran Persiae

(Balloy). — Sporidia areolata et grosse obtuseque verrucosa, 23—25 « diam.

hyalino-flavida.

—_ Pfeilii P. Henn. Fungi camer. I. p. 75. Ad terram Damaraland, Africa.

Mylitta australis Berk. Cfr. Bomm. et Ferry in Rev. myc. 1895. p. 162, ubi

singularis fungus ut ascophorus (e Tuberaceis) simul et basidiophorus

illustratur; quod tamen, ut opinor, novis observationibus confirmari

meretur.

Laboulbeniaceae Peyr.

Sacc. Syll. Fung. VII p. 909, IX p. 1130, XT p. 446.

_ Laboulbenia gigantea Istvanffi in Beihefte zum bot. Centralbl. 1895. p. 327. In

elytris, pedibus thoraceque Pristonychi cavicolae in Croatia.

Sacceharomycetaceae Reess.

Sacc. Syll. Fung. VIII p. 916, XI p. 456.

Schizosaccharomyces Pombe Lindn. in Wochenschr. f. Brauerei 1893 p. 1298 cfr.

P.Hennings Pilz. Östafr.p.30. In cerevisianigritarum (Pombe)in Africa tropica.

975.

980,

985,

Myxomyceteae Wallr.

Sacc. Syll. Fung. VII p. 323, X p. 83, XI p. 462,

Didymium Anellus Morgan Myxom, Miami Vall. p- 64. tab. XI. fig. 41. In foliis

vetustis in silvis Amer. bor.

— minus Lister ap. Morgan Myx. Miami Vall. p. 61. tab. XI. fig. 39. In foliis,

corticibus, lignis etc. in America boreali.

— ceinereum Morgan Myxom. Miami Vall, pP. 70. tab. XII. fig. 46. In lignis et

foliis putrescentibus in America boreali.

Chondrioderma quitense Pat. Bull. Soc, mycol, 1895. p. 212. Ad folia putrida dejecta

in Aequatoria.

Reticularia nitens Morg. New N. Amer. Fungi, 1895, p. 40, tab, II. fig. 11. In

corticibus vetustis, Pasadena Californiae.

Lycogala repletum Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 40. tab. II. fig. 13. Ad

terram in M. S. Bernardino Californiae.

Diachea Thomasii Rex in Morgan Myxom, Miami Vall, p. 57. In frustulis, foliis

etc. in America boreali.

Comatricha Ellisii Morgan Myxom. Miami Vall. p. 49. tab. XI. fig. 29. In ligno

pineo vetusto in Amer. bor,

— flaceida Lister ap. Morg. Myx. Miami Vall, p. 51. In lignis et corticibus

vetustis Quercus, Salicis etc. in America bor.

— erypta (Schw.) Morgan Myxom. Miami Vall. p- 90. tab, XI. fig. 30. In rimis

corticis Aceris, Caryae etc. in Amer, bor.

— caespitosa Sturgis ap. Morg. Myx. Miami Vall, pP. 50. In muscis et lichenibus

in America bor.

Stemonites microspora Lister ap. Morgan Myx. Miami Vall, p- 54. In lignis,

corticibus, foliis in America bor.

— Webberi Rex ap. Morgan Myx, Miami Vall. p- 55. In lignis et corticibus

vetustis in America boreali,

Hemiarcyria montana Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 40, tab, II. fig. 12. In

lignis vetustis, gregatim, in M, S, Bernardino Californiae. £

Sphaeropsideae (l.v.) Sacc.

Sacc. Syll. Fung. III p. 1, X p. 100, XI p. 472.

Phyliostieta Rudbeckiae EII. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 430. In foliis

Rudbeckiae laciniatae, Wisconsin.

— alpina Allesch. Hedw. 1895. p. 257. In foliis languidis Arabidis alpinae in

Bavaria austral,

— Strychni Allesch. in P. Henn. Pilze Ostafr. p- 35. In foliis Strychni Stuhl-

manni in Africa tropica,

— amiota Ell. et. Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. pP. 430. In foliis Arctostaphyli

viscidae et A. Manzanitae in California.

— solitaria Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1805. P- 430. In foliis Piri coronariae,

Indiana.

— castanicola EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad, 1805, p- 431. In foliis Castaneae

chrysophyllae, California,

— $ceaevolae EIl. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1805, P- 436. In foliis Scaevolae Chamisso-

nianae in insula Sandwich,

— Trilli El, et Ev. Proc. Acad, Philad. 1895. p- 430. In foliis Trillii petiolati,

Washington,

990.

995,

1000,

1005.

— XLI —

Phyllosticta Stanhopeae Allesch. Hedw. 1895. p. 215. In foliis Stanhopeae in

calidariis, München.

Phoma Arabidis-alpinae Allesch. Hedw. 1895. p. 259. In caulibus emortuis Ara-

bidis alpinae in Bavaria australi.

— Hyperici Allesch. Hedw. 1895. p. 259. In caulibus emortuis Hyperici mon-

tani in Bavaria australi.

— Clinopodii Allesch. Hedw. 1895. p. 260. In caulibus emortuis Clinopodii vulgaris

in Bavaria australi.

— Cueubali-bacciferi Allesch. Hedw. 1895. p. 260. In caulibus Cucubali bacci-

feri in Bavaria australi.

— sphaeronaemoides Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 169. In caulibus siccis Chelidonii

majoris, Cöte-d’Or, Gallia.

— Knautiae F. Tassi (mox edend.). In caulibus Knautiae arvensis in Italia.

— Fraxinellae F. Tassi (mox edend.). In caulibus exsiccatis Dietamni Fraxinellae

in Italia,

— Ichnocarpi F. Tassi (mox cedend.). In ramulis Ichnocarpi fragrantis culti in

Italia.

— Stephanotidis F. Tassi (mox edend.). In ramulis siccis Stephanotidis flori-

bundae cultae in Italia.

— Nandinae F. Tassi (mox edend.). In ramulis corticatis Nandinae domesticae cultae

in Italia.

— cornigena F. Tassi (mox edend.). In stipulis vivis Acaciae (Mimosa) cornigerae

cultae in Italia.

— Bumeliae F. Tassi (mox edend.). In ramulis emortuis Bumeliae Iycioidis cultae

in Italia.

— peduncularis F. Tassi (mox edend.). In pedunculis siccis Hibisci Rosa-sinen-

sis culti in Italia.

— candidula D. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896., p. 26, Tav. I. n®2, In ramulis

tenellis Corni albae, Italia.

— Idesiae Fr. Sacc., in D. Sacc. Piant. spont. OÖ. B. P. 1896, p. 26, Tav. I®.

n® 3. In ramulis corticatis Idesiae polycarpae, Padova, Italia.

— Calycotomes Roll. Bull. Soc. myc. 1896. p. 6. tab. Il. fig. 10. In ramis siccis

Calycotomes spinosae, Golfe Juan Galliae.

— australis Cooke Grev. XV. p.17 (1886). In foliis Eucalypti, Victoria Australiae.

— Achilleae Sacc. — Ph. Dahliae Sacc. Fl. mycol. Lusit. p. 60. In caulibus

emortuis Dahliae variabilis, Coimbra Lusitaniae.

— Allioniae Bres. in Sacc. Fl. mycol. Lusit. p. 60. In caulibus Allioniae violaceae,

Coimbra Lusitaniae.

— Litoris Sacc. (mox edend.). In culmis putrescentibus Phragmitis communis,

Lido di Venezia in Italia bor.

Macrophoma leucorrhodia Sacc. (mox edenda). In ramis corticatis Ulmi cam-

. pestris, Rigny Galliae.

Pyrenochaeta Cesatiana Sacc. et Flag. Phoma Flag. Syll. XI. p. 491. In caulibus

emortuis Echii vulgaris, Rigny Galliae.

— Bergevini Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 7. tab. II. fig. 8. Ad fibras caulium

Aspidistrae, Neuilly Galliae.

Aposphaeria Lampsanae Allesch. Hedw. 1895. p. 261. In caulibus decorticatis

Lampsanae communis in Bavaria australi.

— ohiensis Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 431. In ligno putri, Ohio.

— Boudieri Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p.6. tab. II. fig.2. In cortice Posidoniae

oceanicae, Golfe Juan Galliae.

Asteroma Parkinsoniae Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad, 1895. p. 431. In legumi-

nibus Parkinsoniae Torreyanae, Arizona,

1010,

1015.

1020,

1025.

1030,

1035,

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— XLUI —

Sphaeronaema Ludwigii Sacc. (mox edend.). In ligno Castaneae vescae pr. Greiz,

Germania.

Sirococeus Posidoniae Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 6. tab. II. fig. 11. In cortice

Posidoniae oceanicae, Golfe Juan Galliae.

Asteroma Menispermi Allesch. Hedw. 1895. p. 216. In foliis Menispermi canaden-

sis culti, München.

— Brunellae Allesch. Hedw. 1895. p. 263. In foliis Brunellae vulgaris in Bavaria

australi.

— dubium Allesch. Hedw. 1895. p. 263. In caulibus Astrantiae majoris et Bu-

pleuri longifolii in Bavaria australi.

— infuscans EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 431. In caule emortuo Ivae

xanthifoliae, Colorado.

— Eupatorii Allesch. Hedw. 1895. p. 264. In foliis Eupatorii cannabini in Bavaria

australi.

— Piperis Allesch. Pilze Ostafr. p. 35. In foliis Piperis capensis in Africa tropica.

— Codiaei Allesch. in Zeitsch. f. Planzenkr. 1895. p. 276. In foliis languescentibus

Codiai picti culti in Germania.

Vermicularia Stachydis Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 108. In caulibus

Stachydis affınis, Mississippi.

Dothiorella Crataegi Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 432. In ramis emortuis

Crataegi Oxyacanthae, Canada.

Placosphaeria inaequalis F. Sacc. in D. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896, p. 26,

tav. I. n® 4. In ramis Tecomae grandiflorae, Italia bor.

Cytospora Abrotani Fautr. Rev. myc. 1895. p. 167. In ramulis siccis Artemisiae

Abrotani, Cöte-d’Or Galliae,

Fusicoccum quereinum EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 432. In ramis

emortuis Quercus coccineae var, tinctoriae, New Jersey.

Capnodiastrum andinum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 231. In foliis arboris ignotae

in Aequatoria.

Haplosporella Francisei D. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896, p. 27, tav. I. n® 5. In

ramulis corticatis emortuis Rhamni cathartici, Padova, Italia.

— mexicana Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 440. In ramis emortuis Magnoliae

mexicanae, Mexico.

Coniothyrium Cedri Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 7. fig. 8. In strobilis Cedri

pr. Paris Gralliae,

Pirostoma coniothyrioides Sacc. (mox edend.). In foliis Scirporum in Italia bor.

Diplodia Sassafras Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 109. In ramis vivis

Sassafras, Mississippi.

— minuta Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 109. In ramis vivis Tecomae

radicantis, Mississippi.

— cacaoicola P. Henn. Fungi camer. I. p. 80. In ramis morbosis Theobromae

Cacao, Kamerun,

— Laureolae Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 168. In ligno vivo caeso, dein exsiccato

Daphnes Laureolae, Cöte-d’Or Galliae.

— celastrina Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 432. In ramis emortuis

Celastri scandentis, Kansas.

— Caecti Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. !p. 7. tab. I. fig. 6. In cladodiis Cacti

opuntiae, Golfe Juan Galliae.

— Calycotomes Roll. Bull. Soc. Mycol. 189. p. 7. tab. I. fig. 4. Ad ramulos

Calycotomes spinosac, Golfe Juan Galliae.

— Umbellulariae Ell. et Ev. Prov. Acad. Philad. 1895. p. 433. In ramis emortuis

Umbellulariae californicae, California.

— XLOI —

Diplodia offieinalis El. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 433. In ramis emortuis

Sassafras officinalis, New Jersey.

— Fabianae F. Tassi (mox edend.). In ramulis Fabianae imbricatae cultae in

Italia bor.

— Saccardiana F. Tassi (mox edend.). In caulibus Solani jasminoidis culti in

Italia bor.

— Styracis F. Tassi (mox edend.). In ramulis siccis Styracis officinalis culti

in italia bor.

— Mühlenbeckiae F. Tassi (mox edend.). In ramulis Mühlenbeckiae complexae

cultae in Italia.

— elaeagneila F. Tassi (mox edend.). In ramulis emortuis Elaeagni rellexae

cultae in Italia,

— Bignoniae F. Tassi (mox edend.). In ramulis emortuis Bignoniae capreolatae

cultae in Italia.

— Thevetiae F. Tassi (mox edend.). In drupa Cerberae Thevetiae in India occid.

— Camphorae F. Tassi (mox edend.). In ramis Camphorae officinarum cultae in

Italia.

— aegyptiaca F. Tassi (mox edend.). In fructibus Anonae Forskalei, Cairo Aegypti.

Dipiodiella Camphorae D. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896 p. 27. Tav. I. n® 6.

In disco ramorum caesorum Camphorae officinarum, Padova, Italia.

— (Pellionella) Cardonia Flag. et Sacc. (mox edenda). In caule decorticato putri

Brassicae oleraceae, Rigny Galliae.

Botryodiplodia ostiolata Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 433. In cortice

emortuo Quercus albae, Ohio.

— Sorghi P. Henn. Pilze Ostafr. p. 34. In culmis Sorghi in Africa tropica.

Ascochyta Arundinis Fautr. et Lamb. Rev. myc. 1895. p. 167. In foliis siccis

Phragmitis communis, Cöte -d’Or Galliae.

— Convolvuli Fautr. Rev. myc. 1895. p. 167. In caulibus siccis Convolvuli arvensis,

Cöte-d’Or Galliae.

— Julibrissin F. Tassi (mox edend.). In leguminibus Albizziae Julibrissin cultae

in Italia.

— Arundinariae F. Tassi (mox edend.). In foliis siccis Arundinariae falcatae cultae

in Italia.

— zeicola Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 433. In culmo vetusto Zeae

Maydis, New Jersey.

Diplodina Malvae Togn. II. Contr. Micol. Tosc. p. 12. In caule Malvae moschatae

in Etruria,

In ramulis tenellis antiquissimae Viticis Agni-Casti, Padova, Italia.

— Baccharidis D. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896. p. 27, Tav. 1:n°%-8; In

ramulis emortuis Baccharidis halimifoliae, Padova, Italia.

— coloradensis Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 434. In caule emortuo

Gutiarreziae Enthamiae, Colorado.

— (Ambrosiella) celodiensis Sacc. (mox edenda). In culmis siccis Arundinis

Donacis, in Italia bor.

Hendersonia nitida Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 436. In foliis vivis Myrsines

in insula Sandwich.

— taphrinicola Tracy et Earle Mississippi Fungi 1895. p. 110. In Taphrina

vetusta ad folia Quercus viventis, Mississippi.

— importata Allesch. Hedw. 1895. p. 216. In bulbis Orchidearum in calidariis

cultarum, München.

Hendersonula Aristidae (Schw.) Ellis in Tracy et Earle Miss. Fungi 1895. p. 110,

Sphaeria Schwein. In foliis Aristidae purpurascentis, Mississippi.

1065.

1075.

1080.

1085.

1090,

-®

— XV —

Stagonospora (Paolettia) mueipara Sacc. (mox edenda). In culmis emortuis

Phragmitis communis in Italia bor,

Septoria Lablabis P. Henn. Pilze Ostafr. p. 34. In foliis Dolichi Lablabis in

Africa tropica.

— Phytolaccae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 232. In foliis Phytolaccae sp. in

Aequatoria.

— Monninae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 232, In foliis Monninae sp. in Aequatoria.

— Aphaniae P. Henn. Hedw. 1895. p. 334. In foliis Aphaniae senegalensis in

Erythraea, Africa.

— coffeicola P. Henn. Fungi camer. I. p. 80. In foliis, quae maculantur, Coffeae

libericae, Kamerun,

— eurvispora EIl. et Ev., N. A. F. n. 3270. Proc, Acad. Philad. 1895, p- 434. In

foliis Aceris glabri, California.

— variegata EIl. et Ev. Proc. Acad, Philad. 1895. p. 434. In foliis Rhamni

Purshianae, California.

— quereina Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 170. In foliis (Juercus pedunculatae,

Cöte-d’Or Galliae.

— Listerae Allesch. Hedw. 1805. p- 272. In foliis Listerae ovatae in Bavaria

australi.

— Colehiei Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 169. In foliis Colchiei autumnalis,

Cöte-d’or Galliae.

— Asplenii Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad,. 1895, p- 434. In foliis Asplenii angusti-

folii, Michigan,

Rhabdospora Schnabliana Allesch. Hedw. 1805, p- 273. In foliis caulibusque

Erigerontis alpinae in Bavaria inf.

— Tabacco Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 169. In caulibus siccis Nicotianae

Tabaci, Cöte-d’or Galliae.

— norvegica Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 169. In caulibus siccis Potentillae nor-

vegicae, Cöte-d'or Galliac.

— Clinopodii Allesch. Hedw. 1895. p. 273. In caulibus Clinopodiü vulgaris in

Bavaria inf.

— Gomphocarpi F. Tassi (mox edend.). Ad caules exsiccatos Gomphocarpi

fruticosi culti in Italia bor.,

Phleospora Bigeloviae Ellis in Contrib, U. S, Nation. Herb. IV. p. 232. In folis

Bigeloviae, California.

— californica EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 435. In foliis Aceris cali-

fornici, California.

Aschersonia marginata Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895, p. 436. In foliis vivis

Psidii in insula Sandwich.

— chaetospora Sacc. Fl. mycol. Lusit. App. p. 62. In foliis nondum emortuis

Sabiceae ingratae, St. Thome.

— paraphysata Sacc. Fl. mycol. Lusit. App. p. 62. In foliis Sabiceae ingratae,

St. Thome,

Leptothyrium minimum Allesch. Fungi camer. I. p. 81. In foliis acegrotantibus

Coffeae libericae, Kamerun,

Melasmia imitans Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 209. In frondibus Pteridis

aquilinae, California.

Labrella Xylostei Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 168. In foliis Lonicerae Xylostei,

Cöte-d’or Galliae.,

Amerosporium einetum EII. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 435. In caule

emortuo Gladioli, California.

Excipulina obscura Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 209. In Tsuga canadensi

Newfoundland.

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Melanconieae (Berk.) Sacc.

Sacc. Syll. Fung. III p. 696, X p. 446, XI p. 562.

Gloeosporium socium Sacc. (mox edend.) In foliis adhuc vivis Phaseoli vulgaris,

socio Uromycete Phaseoli in Italia boreali.

Cerei nycticali culti, Padova, Italia.

— Nymphaearum Allesch. Hedw. 1895. p. 276. In foliis subvivis Nymphaeae albae

in Bavaria inf.

— Senecionis-cordati Allesch. Hedw. 1895. p. 276. In foliis adhuc vivis Senecionis

cordati in Bavaria inf,

— Menispermi Allesch. Hedw. 1895. p. 217. In foliis Menispermi canadensis

ceulti, München.

— Syringae Allesch. Hedw. 1895. p. 276. In foliis adhuc vivis Syringae albae et

S. vulgaris in Bavaria inf.

— eastanicolum Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 435. In foliis Castaneae

vescae dejectis, Delaware.

— Sorauerianum Allesch. in Zeitsch. f. Pllanzenkr. 1895. p. 276. In foliis vivis

Codiaei picti culti in Germania.

— Stanhopeae Allesch. Hedw. 1895. p. 219. In foliis languidis v. emortuis Stan-

hopeae cultae München.

— Anthurii Allescher Hedw. 1895. p. 218. In foliis petiolisque Anthurii Martiani

culti, München.

— Ornithidii Allesch. Hedw. 1895. p. 218. Ad folia emortua Ornithidii densi

culti, München.

— Maxillariae Allescher Hedw. 1895. p. 917. In foliis subvivis Maxillariae rufe-

scentis cultae München.

— Convallariae Allesch. Hedw. 1895. p. 277. In foliis adhuc vivis Convallariae

majalis in Bavaria inf.

Myxosporium Rhamni Allesch. Hedw. 1895. p. 281. In ramulis emortuis Rhamni

Frangulae in Bavaria inf.

— Ariae Allesch. Hedw. 1895. p. 280. In ramis emortuis Sorbi Ariae in Bavaria inf.

— Lyeii Allesch. Hedw. 1895. p. 280. In ramis Lycii barbari culti in Bavaria inf.

Colletotrichum Erythrinae Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 437. In foliis Erythrinae

herbaceae, Florida.

— Azaleae Kll. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 437. In foliis Azaleae viscosae, Florida.

— Commelinae Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 437. In foliis Commelinae angusti-

foliae, Florida.

Naemaspora Strobi Allesch. Hedw. 1895. p. 279. In cortice ramulorum Pini Strobi

in Bavaria inf.

-— Alni Allesch. Hedw. 1885. p. 279. In cortlce Alni incanae in Bavaria inf.

Melanconium cerinigerum ElIl. et Ev. Proc. Acad. Philad 1895. p. 436. In cortice

Aceris emortui, Ohio.

— Alni C. et Ev. Proc. Acad. Philad, 1895. p. 436. In cortice vivo Alni serrulatae,

New Jersey.

Marsonia Panattoniana Berl. Riv. Patol. veget. III. (1895.) p. 342. In foliis vivis

Lactucae sativae, quae corrumpit, Lari di Pisa (Doct. G. Panattoni).

— Rhamni Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 436. In foliis Rhamni Purshianae,

Washington Amer. bor.

— rubiginosa Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 436. In foliis Salicis(?),

Idaho Amer. bor.

1120,

1125.

1130,

1135.

1140.

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— XLVI —

Coryneum? camerunense P. Henn. Fungi camer. I.p. 81. In rhizomate et stipite

emortuis Filicum, Kamerun.

Pestalozzia Cuboniana Brizi Bull. Soc. bot. ital. 1895. p. 100. In foliis emortuis

Myrti communis in agro Romano.

— Psidii Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 232. In fructibus Psidii pomiferi in

Aequatoria.

— brevi-aristata Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 113. In ramis vivis

Tecomae radicantis, Mississippi.

— Terebinthi Brizi Bull. Soc. bot. ital. 1895. p. 99. In ramulis subvivis v. emortuis

Pistaciae Terebinthi in agro Romano,

— Cyecadis Allesch. Hedw. 1895. p. 219. In foliis languidis Cycadis revolutae cultae,

München.

Septogloeum Cynanchi Allesch. Hedw. 1895. p. 282. In foliis languidis Cynanchi

Vincetoxici in Bavaria inf,

Steganosporium irregulare Fautr. Rev. myc. 1895. p. 170. In ramis dejectis Betulae

albae, Cöte-d’Or Galliae. Status conid. Massariae Niessleanae,

Cylindrosporium Tubeufianum Allesch. Hedw. 1895. p. 278. In fructibus imma-

turis Pruni Padi, quae necat, in Bavaria inf,

— Rhamni Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 435. In foliis Rhamni sp.,

California.

— kilimandscharicum Allesch. in P. Henn. Pilze Ostafr, p. 35. In foliis Commelinae

in Africa tropica.

Libertella affinis D. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896, p. 28. Tav. I. n® 10. In

ramis corticatis, emortuis Hibisci syriaci, Padova, Italia.

Hyphomyceteae (Mart.) Sacc.

Sacc. Syll. Fung. IV. p. 1, X. p. 510, XI. p. 586.

Fam. 1. Mucedineae Link.

Microstroma Cycadis Allesch. Hedw. 1895. p. 219. In foliis languidis Cycadis re-

volutae cultae, München.

Fusidium violaceum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 234. In foliis Rubiaceae cujus-

dam in Aequatoria.

Aspergillus rufescens Berl. Fung. Mor. fasc. VII. tab. LIV. fig. 8s—11. In cor-

tice vivo radicum Mori albae in Italia.

— subgriseus Peck Bull. Torr. bot. Cl. 1895. p. 210. In Corticio amorpho, New-

foundland.

Cephalosporium oxysporum March. Champ. copr. VII, p. 135. t. II. fig. 6. In ster-

core aprugno in Arduennis.

— asperum March. Champ. copr. VII. p. 134. t. I. fig. 3. Ad fimum ovinum in

Belgio.

Penicillium olivaceum Wehmer Beitr. Kenntn. einheim. Pilze II. p. 73. t. I. In

fructibus adhuc vegetis Citri Aurantii, C. Limonum, C. mediae et C. deli-

ciosae in Germania.

Botryosporium Leucostachys Zopf in Allesch. Hedw. 1895. p. 220. In foliis lan-

guidis Smilacis grandiflorae cultac, München.

Gliocladium macropodinum March. Champ. copr. VII. p. 135. t. I. fig. 6. In fimo

Macropodis in Belgio.

Physospora elegans Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 44. tab. III. fig. 23. In

truncis putridis Quercus, Ohio Amer. bor. »A typo Physosporae valde

recedens et prob. nov. genus, cum Hypochno comparandum«.

+ Bew &

Rhinotrichum parietinum Sacc. in D. Sacc. Piant. spont. OÖ. B. P. 1896, p. 29. Ad

parietes udos calceos calidariorum, Padova, Italia.

Monosporium stilboideum Sacc. in D. Sacc. Piant. spont. OÖ. B. P, 1896, p. 29,

Tav. I. n® 12. In epicarpio fructuum putridorum Luffae, Padova, Italia.

Botrytis Douglasii Tub. Pflanzenkrankh. p. 283 et Behrens in Zeitsch. Pflanzenkr.

1895. p. 136. In turionibus Pseudosugae Douglasii cultae in Germania.

Verisimiliter mera forma B. vulgaris.

— fulgens March. Champ. copr. VII. p. 137. c. icone. In ascomatibus Ascophani

carnei ad fimum anserinum in Arduennis.

Ovularia Cucurbitae Sacc. (mox edenda). In foliis Cucurbitae Peponis in Italia

boreali.

— conspieua Fautr. et Lamb. Rev. mycol. 1895. p. 169, In foliis Cirsii eriophori,

Cöte-d’Or Galliae.

— lotophaga EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 437. In foliis vivis Loti

Torreyi, California.

Mycogone cinerea Morgan New North Am. Fungi, 1895. p. 45. tab. III. fig. 22.

In Helvella elastica, Ohio Amer. bor.

Ramularia enecans P. Magn. Hedw. 1895. p. (102). In folis Epilobii angustifolii

in Helvetia saxonica.

— eircumfusa EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 437. In foliis Rumieis

obtusifolii, Ohio.

— Hypochaeridis P. Magnus Die Ustil. Brandenb. p. 83. t. 1. fig. 7—10. In foliis

Hypochaeridis radicata in Germania.

— CGampanulae-latifoliae Allesch. Hedw. 1895. p. 283. In foliis vivis Campanulae

latifoliae in Bavaria inf.

— cercosporoides EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 437. In foliis Epilobii

spicati, Washington.

Cercosporella Baccharidis Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 438. In foliis

Baccharidis Douglasii, California.

— nivosa EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 438. In foliis Pentastemonis

Digitalis, Ohio.

Fam. 2. Dematieae Fr.

Coniosporium pulvinatum Annie Lorrain Smith in Journ. of Bot. 1895. p. 344. Ad

culmos Bambusae in Africa orient.

Echinobotryum pulvinatum March. Champ. copr. VII. p. 139. t. II. fig. 2. In stercore

gallinaceo in Arduennis.

Monotospora nigra Morg. New N. Amer. Fungi, 1895. p. 44. tab. III. fig. 20. Ad

culmos Zeae Maydis emortuos, Ohio Amer. bor. »An potius Acremoniella ?«

Stachybotrys erassa March. Champ. copr. VII. p. 140. fig. 4. In stercore damarum

in Belgio.

Periconia felina March. Champ. copr. VII. p. 141. t. II. fig. 4 In fimo felino

vetusto in Belgio.

— scyphophora March. Champ. copr. VII. p. 141. t. II. fig. 1. In ligno stercorato

in Belgio.

Streptoihrix cinerea Morg. New North Am. Fungi, 1895. p. 44. tab. III. fig. 22.

In culmis udis vetustis Zeae Maydis, Ohio Amer, bor.

Trichosporium gossypinum Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 233. In truncis vetustis

in Aequatoria,

— inflatum March. Camp. copr. VII. p. 142. t. Il. fig. 5. In fimo suino in Belgio.

1170.

1175.

1180,

1185.

1190,

— XLVOI —

Cladosporium Stanhopeae Allesch. Hedw. 1895. p. 221. In foliis languidis Stan-

hopeae spec. cultae, München,

— Menispermi Allesch. Hedw. 1895. p. 220. In foliis languidis Menispermi cana-

densis culti, München.

— aromaticum Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 439. In foliis vivis Rhois

aromaticae, California.

Brachysporium pedunculatum Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 440. In

caule emortuo Sambuci glauci, Washington.

Cercospora Henningsii Allesch. in P, Henn. Pilze Ostafr. p. 35. In foliis Manihot

altissimae in Africa tropica.

— Jochromatis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 233. In foliis Jochromatis sp. in

Aequatoria,

— Piperis Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 233. In foliis Piperis sp. in Aequa-

toria.

— hibiseina EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 438. In foliis Hibisci tiliacei

Mexico.

— stomatica Ell. et Davis Proc. Acad. Philad. 1895. p. 438. In foliis Solidaginis

latifoliae, Wisconsin.

— Grindeliae EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 439. In foliis Grindeliae sp.,

California.

— flexuosa Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 118. In foliis Diospyri

virginianae, Mississippi.

— graminicola Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 118. In foliis vivis

Phlei pratensis, Mississippi.

— maritima Tracy et Earle Mississippi Fungi, 1895. p. 119. In foliis Crotonis

maritimi, Mississippi.

— mississippiensis Tracy et Earle Miss. Fungi 1895. p. 119. In foliis Smilacis glaucae

et S. rotundifoliae, Mississippi.

— Galactiae EIl. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 438. In foliis Galactiae Nuttallii,

Florida,

— Chrysobalani Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 438. In foliis Chrysobalani

oblongifolii, Florida.

— Cassavae EII. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 438. In foliis Cassavae, Florida.

Acrothecium recurvaium Morg. New N. Amer. Fungi, 1895 p. 44. tab, IIL. fig. 21.

Ad ligna putrida, Ohio Amer. bor.

Heterosporium Allii Ellis. — var. Bomareae Pat. Bull. Soc. myc. 1895. p. 233. In

foliis Bomareae in Aequatoria.

Sporodesmium punctans ElIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 439. In cortice

ramorum adhuc viventium Planerae aquaticae, Louisiana.

Stemphylium laxum Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 440. In caule emortuo

Bigeloviae graveolentis, Colorado,

— subradians Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 441. In cortice ramorum

Lonicerae involucratae, Colorado.

— heterosporum D. Sacc. Piante spont. OÖ. B. P. 1896. p. 28. In petiolis emortuis

Chamaeropis excelsae, Padova, Ital. bor.

Macrosporium Amaranthi Peck Bull. Torr, Cl. 1895. p. 493. In maculis foliorum

Amaranthi retroflexi, Kansas Amer. bor.

— Clematidis Peck Bull. Torr. Cl. 1895. p. 493. In foliis languidis Clematidis

Fremonti, Kansas Amer. bor.

— XLIX —

Macrosporium toruloides EIl. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 439. In caule

emortuo Urticae Lyallii, Washington.

— eucumerinum Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 440. In foliis vivis

Cucumeris Melonis, New Mexico.

Triposporium bicorne Morgan New N. Am. Fungi, 1895. p. 43. tab. III. fig. 19.

In culmis vetustis Zeae Maydis, parasiticum, ut videtur, Diplodiae Zeae,

Ohio Amer. bor.

Fam. 3. Stilbeae Fr.

Stilbum Euphorbiae Pat. Bull. Soc. mycol 1895. p. 234. In corticibus putridis

Euphorbiae sp. in Acquatoria.

— Rimbachii Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 234. In corticibus in Aequatoria.

— camerunense P. Henn. Fungi camer. I. p. 81. In truncis emortuis, Kamerun.

Stilbomyces Ellis Proc. Acad. Philad. 1895. p. 441. (nov. gen.). Hyphae pallidae,

" steriles, repentes; fertiles in stipites erectos apice capitatos fasciculatae;

conidia bacillaria, pluriseptata, sursum aristata, articulis demum sece-

dentibus.

— Berenice Ell. et Ev. I. c. In cortice vivo Diospyri, Louisiana.

Graphium stercorarium March. Champ. copr. VII. p. 143 t. I. fig. 5. In tela ster-

corata, in fimo leporino et anserino in Belgio.

Isariopsis penicillata Ell. et Ev. Bull. Torr. Cl. 1895. p. 438. In mycelio Meliolae

ad folia Gordoniae Lasianthi, Florida.

Heydenia fungicola Peck Bull. Soc. bot. Cl. 1895. p. 493. In Polyporo abietino,

Maine Amer. bor.

Fam. 4 Tubercularieae Ehrenb.

as 3, arte Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 171. In ramis siccis Rhois

oxicodendri, Cöte-d’Or Galliae. i

Illosporium moricola Sacc. (mox edenda). In ramulis putrescentibus udis Mori

albae in Italia bor.

— flavellum Berk. et Br. Linn. Trans. II. p. 68 (1883), Cooke Handb. Austral.

Fungi p. 386. In lichenibus, Queensland Australiae.

Dendrodochium subtile Fautr. Rev. Myc. 1895. p. 167. In acubus Pini silvestris,

Cöte-d’Or Galliae.

— strietum D. Sacc. Piant. spont. O. B. P. 1896: p. 29, Tab. I. n°11. Ad corticem,

in basi truncorum Cercidis Siliquastri, Padova, Italia,

— hymenuloides Sacc. (mox edend.). In ramulis putridis Mori albae in Italia bor.

— Cattleyae Allesch. Hedw. 1895. p. 221. In bulbis subvivis Cattleyae labiatae

cultae, München.

Cylindrocolla Stuhlmanni P. Henn. Pilze Ostafr. p. 35. In spieis Panici in Africa

tropica.

Volutella toxica Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 171. In ramis emortuis Rhois

Toxicodendri, Cöte-d’Or Galliae.

— sulphurosa Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 8. tab. I. fig. 10. Ad olivas siccas

dejectas, Golfe Juan Galliae.

— Morearum Roll. Bull. Soc. mycol. 1896. p. 8. tab. II. fig. 7. In cortice Fici

Caricae, Golfe Juan Galliae.

Hedwigia Bd, XXXV. 1890. 4

1220.

1225.

1230.

1235.

Bra

Lachnodochium March. Champ. copr. VII. p. 144 (nov. gen.). Sporodochia sub-

globosa, pallida, gelatinosa, sporophoris tecta. Conidia oblonga, continua,

hyalina, in sporophoris exertis acrogeno - capitulata.

— eandidum March. I. c. t. I. f. 2. In fimo aprugno in Belgio.

Fusarium (Fusisporium) Schnablianum Allesch. Hedw. 1895. p. 289. In ramis

decorticatis Aceris Pseudoplatani in Bavaria inf.

— — equiseticola Allesch. Hedw. 1895. p. 289. In caulibus exsiccatis Equiseti

limosi in Bavaria inf,

— (Leptosporium) foliicola Allesch, Hedw. 1895. p. 289, In foliis emortuis

Arabidis alpinae in Bavaria inf.

— Jungiae Pat. Bull. Soc. mycol. 1895. p. 234. In soris Pucciniae sp. ad folia

Jungiae in Aequatoria,

— eoffeicola P. Henn. Fungi camer. I. p. 82. Ad petiolos et folia Coffeae libericae,

Kamerun.

— rhoicolum Fautr. Rev. mycol. 1895. p. 171. In ramis emortuis Rhois Toxico-

dendri, Cöte-d’Or Galliae.

— Nectriae-Turraeae P. Henn. Fungi camer. I. p. 82. In ramis vivis Turraeae

Volkensii, Kilimandscharo Africae.

— acuminatum Ell. et Ev. Proc. Acad. Philad. 1895. p. 441. In caule vivo Solani

tuberosi, New York.

— camerunense P. Henn. Fungi camer. I. p. 81. In corticibus emortuis arborum

deciduarum, Kamerun.

— rubicolor Berk. et. Br, Linn. Trans. II. p. 68 (1883) tab. XV. fig. 10—11. Cooke

Handb. Austral. Fungi p. 387. In foliis Eucalypti supra gallas effusum,

Queensland Australiae,

Appendix.

Boletus corsicus Roll. Bull. Soc. mycol. 1896 p.1 t.1f.5. In pinetis juxta Cistos

in Corsica. — Cfr. supra p. VII.

Schizosaccharomyces octosporus Beyerinck in Centralbl. f. Bact. u. Par. XVI,

1894, p. 49. In uvis aridis.

Penicillium italicum Wehmer Beitr. Kenntn. einheim. Pilze II, p. 68. t. IL. In

fructibus adhuc vegetis Citri Auruntium etc. in Germania.

Redaction: Prof. Georg Hieronymus

unter Mitwirkung von Paul Hennings und Dr. @. Lindau in Berlin.

Druck und Verlag von (. Heinrich in Dresden.