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Library of the
Museum of
Comparative Zoology
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LIBRARY ISSN 0034 - 740X
SEP 28 1990
VOL. 17 (1989) ELA Conspice naturam,
VA RD Inspice structuram!
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Santiago
1989
REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGIA
Propietaria de la Revista:
SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA
Domicilio legal:
Sección Entomología, Museo Nacional de Historia Natural,
interior Quinta Normal, Santiago
Personería Jurídica concedida por
Decreto Ministerio de Justicia N” 2.204, del 10 de Agosto de 1965
Fundada en Santiago el 4 de Junio de 1922,
con el nombre de Sociedad Entomológica de Chile
Consolidada y reorganizada con el nombre de
Sociedad Chilena de Entomología el 30 de Marzo de 1933
Toda correspondencia y colaboraciones deben ser dirigidas a:
Correspondence and collaborations should be addressed to:
SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA
Casilla 21132, Santiago (21) - Chile
Ordenes de subscripción (excepto para Chile)
deben dirigirse a nuestros distribuidores oficiales:
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Wielandstrasse 40
D - 6000 FRANKFURT 1
ISSN 0034 - 740X
VOL. 17 (1989) Conspice naturam,
I nspice structuram!
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La publicación del presente volumen
ha sido posible gracias al generoso legado efectuado a nuestra Sociedad,
por el Dr. CHarLEs P. ALEXANDER
Han cooperado en la edición de este volumen:
BERLIMED AGROQUIMICA Concesionaria de Schering A.G. - R.F.A.
SHELL CHILE S.A.C. e 1.
SUMARIO
ELGuETA D., M. y G. ARRIAGADA S. Estado actual del conocimiento de los coleópteros
de Ghile (Insecta: (Coleoptera)... .P.. IL. A de
CisTERNAS A., E. y R. CarriLLO Lt. Ciclo estacional de Schizochelus serratus Phil.
(Coleoptera: ¡Scarabacidac) da A
Durer, J.P. El género Tetragoneura Winnertz, 1846 en la Patagonia (Diptera: Myce-
tophilidae). Nueva clave para los machos y descripción de dos nuevas especies
Fritz, M. y H. Toro. Los tipos de Coelzoxys (Hymenoptera: Megachilidae) descritos
por EX Holbein a o e A
Jackson S., D. Descripción de la larva y pupa de Cycloderus signaticollis F. et G.
(Coleoptera: Pytiida ai rd py ello
CH1ArPA T., E. Nidos poligínicos de Vespula germanica (F.) (Hymenoptera: Vespidae)
y ¡cusociabilidad ute arenosa orde celo la eel aten oas (8 or OS o ISO NOIA ER
MORONI B., J. Aporte al conocimiento de los Haliplidae de Chile. 11. Descripción del
tercer instar larval de Haliplus valdiviensis Moroni, 1980 (Coleoptera: Dytiscoidea)
Noras CIENTÍFICAS
Durer, J.P. Primera Mycetophila patagónica hallada en las Yungas de Bolivia (Dipte-
ra: Mycetophilidae) e CIA A a a 0
ELGUETA D., M. Antecedentes sobre especies de reciente introducción a Chile (Dipte-
ra: Stratiomyidae; Elymenoptera: Mespidac)Ige e os
COMENTARIOS BIBLIOGRÁFICOS: las daa als LEN
NOBICIAS e o USE ena allas A A
OBITUARIO
FlpPrOLY TE AN vIER (1892-1980) coo a Ad a
LVETANO CAMPOS -ITREET (1927 LI E
BHEODORE EH. HUBBELL> oa SE
Instrucciones alos: autores E A A A
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Pág.
REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGIA ISSN 0034 - 740X
Publicación oficial de la Sociedad Chilena de Entomología,
Casilla 21132, Santiago (21) - Chile
debe citarse: Rev. Chilena Ent.
Representante legal: El Presidente en ejercicio de la Sociedad
Director Responsable: Lic. Mario ELGuETA D.
Editor: Dr. DanteL Frías L.
Comité Editorial Permanente
Dr. Jaime APABLAZA H.
Dr. JorGE ArTIGAS C.
Dr. Danko Brncic J.
Prof. RaúL Cortés P.
Dr. RENÉ CovarruBIas B.
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Prof. José HERRERA G.
Prof. VICENTE Pérez D'A.
Prof. JarmE SOLERVICENS A.
Prof. HaroLDO Toro G.
Sociedad Chilena de Entomología
Directorio 1987-1988
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Directorio 1988-1989
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Directorio 1989-1990
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Custodio y Bibliotecario: Ing. Agr. Ernesro Prapo C.
Impreso en los talleres de
EDITORIAL UNIVERSITARIA, S.A.
San Francisco 454 - Santiago
en el mes de diciembre de 1989
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 5-60
ESTADO ACTUAL DEL CONOCIMIENTO DE LOS COLEOPTEROS DE CHILE
(INSECTA: COLEOPTERA)
Mario ELGUETA D.' y GERARDO ARRIAGADA S.*
RESUMEN
A base de una recopilación bibliográfica y conocimiento del grupo, se entrega una vision actualizada
del estado de investigación de los Coleoptera de Chile. Se incluye un esquema de clasificación de las
familias consideradas válidas y se tratan por separado todas aquellas representadas en Chile; para cada
una de ellas se da número de género y especies, incluyendo antecedentes biológicos conocidos. En el
caso de familias con pocos representantes, se ofrece un listado taxonómico, siempre que no existan
catálogos recientes o se haya señalado expresamente los géneros y número de especies que los
constituyen.
Georyssidae, Eucinetidae y Limnichidae, los Curculionidae Neopachytychius squamosus Hustache y
Naupactus verecundus Hustache y el Silphidae Oxelytrum anticola (Guérin), son citados por primera vez
para Chile.
Se mencionan los siguientes taxa omitidos en el catálogo de Blackwelder (1944-1957), indicando
entre paréntesis el grupo en el cual son tratados en este aporte; se propone además una nueva
sinonimia:
ABSTRACT
Based upon bibliographical review and practical knowledge of this group, an actualized view of the
investigation state of chilean Coleoptera is given. A classification of the valid families is included. All
families that are present in Chile are separately analized, and biological data, genera and species
numbers are detailed.
For small families without recent revision or checklist, a taxonomic list is given.
Georyssidae, Eucinetidae and Limnichidae, the weevils Neopachytychius squamosus Hustache and
Naupactus verecundus Hustache, and the carrion beetle Oxelytrum anticola (Guérin) existent in Chile are
cited for the first time.
Fourteen taxa omitted in Blackwelder's Checklist (1944-1957) are mentioned, between parenthesis
the group in which these taxa are cited, and a new synonymy is proposed:
Brachidia gallerucoides Germain, 1855 (Melyridae)
Philophlaeus Germain, 1855 (Biphyllidae - Languriidae)
Melanophthalma seminigra Belon: Philippi, 1887 (Lathridiidae)
Endophloeus angustatus Solier, 1851 (Colydiidae)
Cis chilensis Germain, 1855 (Ciidae)
Promechetlus Solier, 1851 (Oedemeridae)
Promechetlus variegatus Solier, 1851 (Oedemeridae)
Nephrosis Fairmaire £ Germain, 1863 (Oedemeridae)
Nephrosis sulcicollis Fairmaire £ Germain, 1863 (Oedemeridae)
Oligorrhina Fairmaire 8 Germain, 1863 (Oedemeridae)
Oligorrhina ruficollis Fairmaire € Germain, 1863 (Oedemeridae)
Nimales Fairmaire € Germain, 1861 (Oedemeridae)
Nimales longicornis Fairmaire €e Germain, 1861 (Oedemeridae)
Pseudomeloe machado: Germain, 1903 (Meloidae)
Enneboeus baeckstroemi Pic, 1924 = Archeocrypticus chilensis Kaszab, 1969 nov. syn. (Archeocrypticidae).
¡Sección Entomología, Museo Nacional de Historia Natural, Casilla 787, Santiago-Chile.
“Sociedad Chilena de Entomología, Casilla 21132, Santiago-Chile.
(Recibido: 1 de septiembre de 1988. Aceptado: 20 de septiembre de 1988).
6 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
CONTENIDO
pág.
Introducción... de ea 6
Lista sistemática de las familias del Or-
demboleoplera aia sr 7
Análisis de las familias representadas en
E a o 9
Recuento del número de géneros y espe-
cies por familias presentes en Chile .. 38
ELA CCC 39
Eteratura citada aid e Ro 39
Indice alfabéticoyonas.comistlodd spa 53
INTRODUCCION
Para los interesados en el estudio de los co-
leópteros de Chile, una obra clásica de consul-
ta es el catálogo de los coleópteros de México,
América Central, Indias Occidentales y Sud-
américa (Blackwelder, 1944-1957); sin embar-
go, durante los más de 30 años transcurridos
desde su publicación, se han efectuado nume-
rosas revisiones que involucran descripciones
de nuevos taxa, sinonimias y transferencias
como, asimismo, estudios que han permitido
precisar más claramente los límites de catego-
rías supragenéricas.
No todas estas contribuciones son conoci-
das o están a disposición de los investigadores
nacionales; es por ello que se ha estimado de
interés dar a conocer la información recopila-
da por el personal de la Sección Entomología
del Museo Nacional de Historia Natural, a
través de años de paciente búsqueda.
En esta oportunidad se intenta entregar
una visión global del conocimiento actual de
los coleópteros de Chile, señalando las fami-
lias representadas, el número de géneros y
especies para cada una y una lista sistemática
de los taxa de aquellas familias poco numero-
sas, que no tengan revisiones o catálogos re-
cientes, O para las cuales no se haya hecho una
relación de los géneros que la componen y del
número de especies de éstos.
La ejecución de este trabajo está basado en
la contribución de Blackwelder (1944-1957) y
la información publicada con posterioridad;
sin embargo, y debido al hecho de haberse
detectado omisiones de taxa propios de Chile,
citados o descritos con anterioridad a la publi-
cación de dicho trabajo, se ha debido revisar
las publicaciones originales y catálogos anti-
guos (2.e.: Bréthes, 1925; Fairmaire € Ger-
main, 1861, 1863; Gemminger $ Harold,
1870; Germain, 1855, 1903; Philippi, 1887;
Solier, 1851). Se ha utilizado, además, como
fuente de información adicional, la colección
de Coleoptera del Museo Nacional de Historia
Natural (Santiago-Chile), en la cual se encuen-
tra el material estudiado e identificado por
Philibert Germain.
Se presenta en primer lugar una clasifica-
ción actualizada de Coleoptera, aceptada con
algunas modificaciones y en forma más o me-
nos universal, hasta el nivel de familia; se
indica con un asterisco las familias para las
cuales se conocen representantes en Chile. Di-
cha clasificación está basada en los aportes de
Crowson (1955, 1964, 1967, 1970, 1971,1972,
1973b, 1975, 1981, 1984), Lawrence (1982),
Lawrence € Newton (1982), Newton (1985),
Sen Gupta 8 Crowson (1966, 1969a, 1969b,
1973) y Watt (1967a, 19657b, 1974a, 1974b,
1987), apoyándose también en las contribu-
ciones de Abdullah (1969a, 1971), Britton
(1974, 1979), Pal 8 Lawrence (1986) y Scholtz
et al. (1987).
Luego cada familia con representantes en
Chile es tratada por separado, en orden siste-
mático, señalando antecedentes biológicos dis-
ponibles y un detalle de los taxa conocidos en
nuestro territorio; en varios casos se entregan
antecedentes inéditos y se mencionan aquellos
taxa omitidos en catálogos previos. Se incluye
en esta parte, la información relativa a Co-
leoptera fósil y Strepsiptera; aun cuando en
este último caso no existe un consenso general
para considerarlo como coleópteros (Crow-
son, 1955, 1981; Lawrence € Newton, 1982;
Riek, 1974, 1979), evidentemente se trata de
un grupo relacionado.
En tercer lugar se hace un listado de espe-
cies de aquellas familias poco representadas
en nuestra fauna. Por último, se entrega un
recuento del número de géneros y especies de
cada una de las familias representadas en
Chile.
En la Literatura citada se incluyen las publi-
caciones posteriores a la contribución de
Blackwelder (1944-1957) y aquellas anteriores
que fueron omitidas en este catálogo, en las
cuales se citan o describen taxa presentes en
Chile. Parte de la información recopilada ha
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 7
sido extraída de Zoological Record's (años
1947 a 1971; excluyendo 1967, 1968 y 1970),
Abstracts of Entomology (años 1970 a 1982;
excluyendo 1972 y 1973) y Biological Abs-
tracts (años 1967, 1968, 1970, 1972, 1973 (sólo
volumen 56), 1982 a 1988; hasta vol. 88, nú-
mero 1); en las respectivas citas se indica cuan-
do el trabajo no ha sido visto.
LISTA SISTEMATICA DE LAS FAMILIAS DEL ORDEN COLEOPTERA
(ENTRE PARENTESIS SINONIMOS Y/O TAXA INCLUIDOS)
El asterisco indica las familias representadas en Chile
Suborden ARCHOSTEMATA
Superfamilia CUPEDOIDEA
1. Ommatidae (Tetraphaleridae, Omma-
didae)
2. Cupedidae*
3. Micromalthidae
Suborden ADEPHAGA
Superfamilia CARABOIDEA
4. Rhysodidae
5. Paussidae (incluye Ozaeninae)*
6. Cicindelidae*
7. Carabidae*
8. Trachypachidae*
9. Haliplidae*
10. Amphizoidae
11. Hygrobiidae
12. Noteridae
13. Dytiscidae*
14. Gyrinidae*
Suborden MYXOPHAGA
Superfamilia SPHAERIOIDEA
15. Lepiceridae (Cyarhecgtidas)
16. Torridincolidae
17. Hydroscaphidae
18. Sphaeriidae
Suborden POLYPHAGA
Superfamilia HYDROPHILOIDEA
19. Hydraenidae (Limnebiidae)*
20. Spercheidae
21. Hydrochidae*
22. Georyssidae*
23. Hydrophilidae*
Superfamilia HISTEROIDEA
24. Sphaeritidae
25. Synteliidae
26. Histeridae (Niponiidae)*
Superfamilia STAPHYLINOIDEA
27. Ptiliidae (Cephaloplectidae, Limulo-
didae)*
28. Agyrtidae
29. Leiodidae (Anisotomidae, Camiaridae,
Catopidae, Cholevidae, Colonidae, Em-
pelidae, Leptinidae, Leptodiridae, Lio-
didae)*
30. Scydmaenidae*
31. Micropeplidae
32. Dasyceridae
33. Silphidae*
34. Staphylinidae (Brathinidae, Scaphi-
diidae)*
35. Pselaphidae (Clavigeridae)*
Superfamilia EUCINETOIDEA
36. Clambidae (Calyptomeridae)
37. Eucinetidae*
38. Scirtidae (Helodidae, Cyphonidae)*
Superfamilia DASCILLOIDEA
39. Dascillidae*
40. Karumiidae (Zarudniolidae)*
41. Rhipiceridae (Sandalidae)*
Superfamilia SCARABAEOIDEA
42. Lucanidae*
43. Trogidae*
44. Ceratocanthidae (Acanthoceridae)*
45. Passalidae
46. Pleocomidae
47. Ochodaeidae
48. Hybosoridae*
49. Glaphyridae*
50. Scarabaeidae (Geotrupidae)*
51. Diphyllostomatidae
52. Glaresidae
Superfamilia BYRRHOIDEA
53. Byrrhidae*
Superfamilia DRYOPOIDEA
54. Eulichadidae
55. Ptilodactylidae
56. Chelonariidae
57. Psephenidae (incluye Eubriinae)*
8 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
58. Elminthidae (Elmidae, Helminthidae)*
59. Lutrochidae
60. Dryopidae (Chiloeidae)*
61. Limnichidae*
62. Heteroceridae*
Superfamilia BUPRESTOIDEA
63. Buprestidae*
Superfamilia ARTEMATOPOIDEA
64. Artematopidae (Eurypogonidae)
65. Callirhipidae
66. Brachypsectridae
Superfamilia ELATEROIDEA
67. Cebrionidae*
68. Elateridae*
69. Throscidae (Trixagidae)*
70. Eucnemidae (Perothopidae)*
71. Cerophytidae
Superfamilia CANTHAROIDEA
72. Cneoglossidae
73. Plastoceridae
74. Homalisidae
75. Lycidae
76. Drilidae
77. Phengodidae*
78. Telegeusidae
79. Lampyridae*
80. Omethidae
81. Cantharidae (Chauliognathidae, Te-
lephoridae)*
Superfamilia DERMESTOIDEA
82. Derodontidae*
83. Nosodendridae
84. Dermestidae*
85. Thorictidae
86. Jacobsoniidae (Sarothriidae)
Superfamilia BOSTRICHOIDEA
87. Bostrichidae (Bostrychidae, Lyctidae)*
88. Anobiidae*
89. Ptinidae*
Superfamilia CLEROIDEA
90. Phloiophilidae
91. Peltidae*
92. Lophocateridae
93. Trogossitidae (Temnochilidae)*
94. Chaetosomatidae
95. Cleridae*
96. Acanthocnemidae
97. Phycosecidae
98. Melyridae (Dasytidae, Malachiidae)*
Superfamilia LYMEXYLOIDEA
99. Lymexylidae*
Superfamilia CUCUJOIDEA (Sección Clavi-
cornla)
100. Nitidulidae (incluye Cateretinae, Cybo-
cephalinae)*
101. Rhizophagidae (Smicripidae, Monoto-
midae)*
102. Boganiidae
103. Phalacridae
104. Protocucujidae*
105. Sphindidae (Aspidiphoridae)*
106. Hobartidae
107. Cucujidae (Passandridae)*
108. Phloeostichidae*
109. Silvanidae (incluye Uleiotinae: Ulerota)*
110. Cavognathidae*
111. Cryptophagidae (Hypocopridae)*
112. Helotidae
113. Byturidae
114. Biphyllidae*
115. Lamingtoniidae
116. Languriidae (incluye Loberinae, Tora-
minae)*
117. Erotylidae*
118. Cryptophilidae
119. Propalticidae
120. Bothrideridae
121. Cerylonidae (Aculagnathidae, Dolo-
sidae)*
122. Corylophidae (Orthoperidae)*
123. Sphaerosomatidae
124. Endomychidae
125. Coccinellidae*
126. Discolomidae (Notiophygidae)
127. Merophysiidae*
128. Lathridiidae*
Superfamilia TENEBRIONOIDEA (Sec-
ción Heteromera)
129. Merycidae
130. Colydiidae*
131. Prostomidae
132. Mycetophagidae*
133. Ciidae (Cisidae)*
134. Pterogeniidae
135. Tetratomidae
136. Melandryidae (Serropalpidae)*
137. Mordellidae*
138. Rhipiphoridae*
139. Synchroidae
140. Cephaloidae
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 9
141. Oedemeridae*
142. Pyrochroidae
143. Anthicidae (Pedilidae)*
144. Aderidae (Circaeidae, Euglenidae, Hy-
lophilidae, Xylophilidae)*
145. Cononotidae*
146. Meloidae*
147. Scraptiidae*
148. Othniidae (Elacatidae,Eurystethidae)
149. Trictenotomidae
150. Pythidae (Pilipalpidae)*
151. Boridae
152. Salpingidae (Aegialitidae)*
153. Inopeplidae
154. Mycteridae (Hemipeplidae)*
155. Monommidae
156. Zopheridae*
157. Lagriidae*
158. Trachelostenidae*
159. Tenebrionidae (Alleculidae, Nilio-
nidae)*
160. Archeocrypticidae*
161. Chalcodryidae*
162. Perimylopidae*
163. Dacoderidae (Tretothoracidae)
Superfamilia CHRYSOMELOIDEA
164. Cerambycidae (Disteniidae)*
165. Megalopodidae
166. Bruchidae*
167. Chrysomelidae*
Superfamilia CURCULIONOIDEA
168. Nemonychidae (Rhinomaceridae)*
169. Anthribidae (Platystomidae)*
170. Urodontidae
171. Belidae*
172. Oxycorynidae*
173. Aglycyderidae (Proterhinidae)
174. Allocorynidae
175. Attelabidae (Rhynchitidae)*
176. Apionidae*
177. Brentidae (Brenthidae)
178. Curculionidae (incluye Scolytidae, Platy-
podidae)*
ANALISIS DE LAS FAMILIAS REPRESENTADAS EN CHILE
Orden COLEOPTERA
Los cuatro subórdenes reconocidos en la ac-
tualidad (Archostemata, Adephaga, Myxop-
haga y Polyphaga) se encuentran definidos
por Crowson (1955), trabajo en el cual propo-
ne el tercero de ellos. En Chile sólo faltan
representantes de Myxophaga.
Suborden ARCHOSTEMATA
Superfamilia CUPEDOIDEA
Crowson (1955) reconoce inicialmente dos fa-
milias; con posterioridad eleva este número a
cuatro y entrega una clave para su reconocl-
miento (Crowson, 1975). Lawrence € Newton
(1982) distinguen por su parte a 3 de ellas
como entidades válidas, estimando que Te-
traphaleridae debe ser incluida en Ommati-
dae (Ommadidae según Crowson, 1975 y
1981). En Chile sólo se encuentra presente
una familia.
Familia CUPEDIDAE
Los adultos de la única especie presente en
nuestro país, suelen ser atraídos por la luz; se
pueden encontrar en resquicios de rocas O
bajo ellas (Peña, 1987). Están presentes a lo
largo de todo el año, siendo más abundantes
en los meses más desfavorables climáticamen-
te; es frecuente colectarlos bajo la corteza de
diversos árboles (p. ej.: quillay, eucalipto) y
troncos, llegando hasta los 2.000 msnm. Su
distribución en nuestro territorio es de Co-
quimbo a Maule y está presente también en
Argentina (Monrós 8 Monrós, 1952). No exis-
ten antecedentes de su biología.
Neboiss (1960) crea el género Prolixocupes
para ubicar la especie presente en Chile; el
género es tratado con posterioridad por
Crowson (1962).
Suborden ADEPHAGA
Superfamilia CARABOIDEA
Crowson (1955) considera inicialmente a 10
familias, incluyendo a Cicindelidae como una
subfamilia de Carabidae; más tarde (Crowson,
1981) reconoce la validez de Cicindelidae, cri-
terio que es compartido por diversos autores
10 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
(Lawrence £€ Newton, 1982; Mandl, 1971;
Watt, 1982 y 1983). Reichardt (1977) incluye
en Carabidae a Cicindelidae, Trachypachidae
y Paussidae; este trabajo constituye un valioso
aporte ya que entrega una visión global del
conocimiento de los Carabidae (sensu lato) neo-
tropicales, incluyendo claves para tribus y gé-
neros y una completa bibliografía; además,
entrega para cada taxón su distribución geo-
gráfica y número de categorías de rango in-
mediatamente inferior. En nuestro país se en-
cuentran representadas 7 de las 11 familias
integrantes de este grupo (sensu Crowson,
1981).
Familia PAUSSIDAE
Se les encuentra bajo corteza de árboles muer-
tos (Tropopsis) y bajo piedras al borde del mar
(Pachyteles); su distribución va desde el área
costera de Valparaíso a Llanquihue. No exis-
ten antecedentes biológicos de las especies
presentes en Chile.
Los representantes chilenos de esta familia,
2 géneros y 3 especies, se encontraban previa-
mente incluidos en Carabidae (Ozaeninae).
Familia CICINDELIDAE
Se encuentran por lo general en lugares abier-
tos, con suelos de textura arenosa; las larvas
viven en agujeros verticales que construyen en
el suelo y, al igual que los adultos, son preda-
doras (Peña, 1987). La mayor actividad de los
adultos coincide con las horas de máximo Ca-
lor; se encuentran a lo largo de todo el país,
excepto el sector entre Puerto Montt y Puerto
Natales y zona altoandina.
Pycnochila fallaciosa, única especie conocida
del género y propia del extremo austral, es
considerada como uno de los representantes
más primitivos de la familia (Crowson, 1955);
la larva de esta especie ha sido descrita por
Cekalovié (1981), entregando además datos
de hábitat y distribución geográfica. La larva
de Cicindelidia gormazi ha sido descrita por Ce-
kalovié £e Reyes (1986, como Cicindela).
Peña €: Barría (1973) efectúan una revisión
taxonómica de los representantes chilenos. De
acuerdo a Reichardt (1977), pocos autores
aceptan la división de géneros adoptada en el
aporte de Peña 8: Barría (op. cit.), sin embargo
este autor considera de conveniencia su utili-
zación.
En Chile se encuentran 6 especies reparti-
das en 4 géneros. Se debe agregar a la entomo-
fauna chilena a Cicindelidía trifasciata microso-
ma, nueva entidad del Sur del Perú y extremo
Norte de Chile, descrita originalmente
(Mandl, 1974) en el género Cicindela.
Familia CARABIDAE
De hábitos carnívoros, tanto larvas como adul-
tos, se les encuentra en todo tipo de ambientes
a lo largo y ancho del país. Un porcentaje
significativo de las especies son endémicas, Sir-
viendo de base para estudios biogeográficos
(Jeannel, 1937, 1938, 1942, 1962c). Desde el
punto de vista taxonómico esta familia ha sido
bien estudiada, siendo el mayor problema el
de recopilar los trabajos dispersos publicados
en diversas revistas extranjeras; hay disponi-
bles claves para el reconocimiento de las cate-
gorías supraespecíficas (Reichardt, 1977).
Es una de las familias más diversificadas en
nuestro territorio, con 76 géneros y 331 espe-
cies (basado en Ashworth € Hoganson, 1987;
Blackwelder, 1944a; Bonniard de Saludo,
1969, 1970; Erwin, 1972, 1974, Hoganson ée
Ashworth, 1982; Jeannel, 1962c; Mateu,
1955, 1964, 1970, 1973, 1976, 1986; Mateu ée
Négre, 1972; Négre, 1972, 1973a-b; Niedl,
1966; Noonan, 1974, 1981; Perrault, 1984;
Reichardt, 1977; Schweiger, 1959; Straneo,
1951, 1953, 1957, 1963, 1969, 1986; Straneo
8 Jeannel, 1955; Uéno, 1971, 1974). Deuve
(1989) describe una nueva especie de Ceroglos-
sus, la cual no ha sido considerada en el re-
cuento numérico por considerarse que constl-
tulría una sinonimia.
Familia TRACHYPACHIDAE
Grupo muy poco diversificado a nivel mun-
dial, representado en Chile por dos especies,
una de ellas ha sido citada recientemente para
nuestro país (Ashworth € Hoganson, 1987;
Hoganson 8 Ashworth, 1982); se encuentran
en el suelo de bosques húmedos del Sur del
país. No existen antecedentes biológicos de
estas especies.
Los representantes de esta familia se consi-
deran elementos de tipo relictual (Reicharadt,
1977). Bell (1966) indica que se debe efectuar
Elgueta Y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 11
un estudio del género Systolosoma Solier, en el
cual se ubican las especies chilenas, a fin de
determinar con exactitud sus relaciones con
Trachypachus Motschulsky.
Familia HALIPLIDAE
Su hábitat lo constituyen cuerpos de agua lén-
ticos (lagunas, charcas), con abundantes algas
y plantas subacuáticas y fondos ricos en detri-
tus. De régimen fitófago, las larvas viven entre
el detritus; los adultos se desplazan en el agua,
entre la vegetación sumergida, por movimien-
tos alternados de las patas metotorácicas y sue-
len ser atraídos a la luz. En Chile sólo se en-
cuentra el género Haliplus, con tres especies
(Moroni, 1980).
Familia DYTISCIDAE
Larvas y adultos son de hábitos acuáticos y
carnívoros; los adultos tienen gran capacidad
de vuelo lo que les permite colonizar nuevos
ambientes y es frecuente que sean atraídos por
la luz. Se encuentran en todo el territorio y en
la zona central llegan hasta los 2.300 msm, en
el nacimiento de pequeños cursos de agua. En
lo que respecta a Chile, sólo se conocen las
larvas de Megadytes australis (Germain), las
cuales se entierran en el fondo fangoso (Ceka-
lovic, 1974).
Lancetes (con 13 especies en Chile) es un
interesante género que exhibe una distribu-
ción austral, encontrándose el grueso de las
especies en América del Sur y el resto en Islas
Malvinas, Tristán da Cunha, Gough, Juan
Fernández, Australia, Tasmania y Nueva Ze-
landa (Bachman 8 Trémouilles, 1981).
-— Descontando aquellas especies cuya pre-
'sencia en nuestro territorio es dudosa (Canthy-
| drus remator Sharp, Desmopachria ovalis Sharp,
' Agametrus peruvianus (Laporte), Copelatus mso-
| litus Chevrolat, Rhantus nitidus (Brullé), Lance-
¡tes flavoscutatus Enderlein y Megadytes glaucus
¡ (Brullé); Juan Moroni, comunicación perso-
¡ nal), nuestro país contaría con 10 géneros y 31
¡especies (Bachmann € Trémouilles, 1981;
| Bistróm, 1988; Moroni, 1973, 1985b, 1988;
¡ Roughley 8: Wolfe, 1987; Trémouilles, 1984;
'¡Trémouilles £ Bachmann, 1980).
1 Laccornellus ha sido creado recientemente
¡(Roughley 8 Wolfe, 1987) para incluir a Lac-
,¡cornis copelatoides (Sharp). Bidessus skottsberga
Zimmermann ha sido transferido (Bistróm,
1988) al género Liodessus; Bidessus en conse-
cuencia no se encuentra representado en
Chile.
Familia GYRINIDAE
Al igual que ditíscidos, las larvas y adultos son
de hábitos acuáticos y activos predadores; fre-
cuentan cuerpos de agua de poca corriente.
Su nombre deriva de la conducta que exhiben
los adultos de girar sobre sí mismos en la su-
perficie del agua.
Moron1 (1973, 1985b) reconoce para Chile
2 géneros con dos especies cada uno; Black-
welder (1944a, página 82) menciona para Chi-
le a Gyretes pygmaea Régimbart, género y espe-
cie no citados por Moroni (op. cit.).
Suborden POLYPHAGA
Este suborden agrupa la mayor cantidad de
especies mostrando una gran diversidad bio-
lógica y estructural; a nivel mundial cerca del
90% de las especies de Coleoptera pertenecen
a este grupo.
Superfamilia HYDROPHILOIDEA
Adultos generalmente de larga vida en com-
paración al estado larval, cuyo desarrollo
completo se efectúa en pocas semanas; con
excepciones, tanto adultos como larvas se en-
cuentran en el mismo medio. Adaptaciones a
ambientes xéricos están ausentes y la alimen-
tación a base de plantas vasculares es rara.
Familia HYDRAENIDAE
Son insectos acuáticos de tamaño pequeño (2 a
3 mm); se les encuentra caminando en rocas y
algas, en las riberas de cuerpos de agua. Algu-
nas especies se encuentran asociadas a musgos
y la mayoría bajo piedras. Se pueden colectar
agitando los fondos arenosos y esperando que
floten en la superficie del agua, en donde per-
manecen suspendidos boca abajo; su captura
se ve facilitada debido a que no nadan (Per-
kins, 1980).
De la lista de especies presentes en Chile
(Moroni, 1973, 1985b), se debe eliminar a
Ochthebius jensenhaarupi Knisch y agregar Gym-
nochthebius plesiotypus Perkins. En resumen y
de acuerdo a la revisión taxonómica de la fa-
12 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
milia (Perkins, 1980), en nuestro país se en-
cuentran presentes los géneros Aydraenida (2
especies) y Gymnochthebius (7 especies).
Esta familia, debido al hecho de compartir
caracteres en común con Ptiliidae, es ubicada
por algunos autores dentro de la superfamilia
Staphylinoidea (Lawrence, 1982; Lawrence ec
Newton, 1982; Newton, 1985). En este caso se
ha adoptado un esquema conservador, a la
espera de una mayor discusión en relación a
estos planteamientos.
Familia HIDROCHIDAE
Considerada como una subfamilia de Hy-
drophilidae (Lawrence € Newton, 1982), está
representada en Chile por sólo una especie
(Hydrochus stolpi Germain), de la cual no se
tienen antecedentes biológicos. Dada para di-
versas localidades entre Valparaíso y Chiloé
(Moron1, 1973: Hydrophilidae-Hydrochi-
nae); a las localidades dadas por Moron1 (op.
cit.) se debe agregar Nuble (Germain, 1901;
página 521, localidad típica).
Familia GEORYSSIDAE
Se reconoce la presencia en Chile de insectos
de esta familia a base de material depositado
en el Museo Nacional de Historia Natural e
identificado por Philibert Germain, el cual al
parecer aún no ha sido descrito.
Familia HYDROPHILIDAE
Adultos saprófagos y larvas predatoras, estas
últimas con piezas bucales adaptadas para di-
gestión extraoral; son de hábitos acuáticos O
semiacuáticos, pudiéndose encontrar, por
ejemplo, bajo algas varadas y excrementos de
diversos animales. Los adultos suelen ser
atraídos a la luz y su tamaño varía entre 1,5 a
40 mm. Se conocen antecedentes biológicos de
Anticura flinti Spangler (Spangler, 1979a), Cy-
lorygmus flintispangleri Moroni (Moron1,
1985a; Spangler, 1979b: como C. hineatopunc-
tatus) y Tropisternus setiger Germar ( Fernández
$ Domizi, 1983).
De acuerdo a Moroni (1973, 1985a-b), se
encuentran en Chile 11 géneros con un total
de 18 especies; a estas cifras se deben agregar
Hemiosus multimaculatus (Jensen-Haarup), cita-
da por primera vez para Chile por Oliva
(1987), y al género Paracymus Thomson con
dos especies: P. corrmae Wooldridge (1969) y
P. gramformis Bruch (1915), esta última trata-
da también por Wooldridge (1973), citadas
ambas para nuestro país por Ashworth 8 Ho-
ganson (1987). Se ha mencionado previamen-
te la presencia del género Cercyon, con dos
especies no determinadas (Moroni, 1973); en
resumen, de acuerdo a los antecedentes pre-
vios y sin incluir a Cercyon, en Chile se encuen-
tran 12 géneros y 21 especies.
Superfamilia HISTEROIDEA
Grupo representado en nuestro país por una
familia. Debido a la existencia de numerosas
especializaciones en larvas de Sphaeritidae y
Synteliidae, las cuales son comunes a Histeri-
dae e Hydrophilidae, esta superfamilia es in-
cluida también en Hydrophiloidea (Lawrence,
1982; Lawrence €: Newton, 1982).
Familia HISTERIDAE
Predadores, tanto larvas como adultos, están
presentes en todos aquellos sustratos que fa-
vorecen el desarrollo de otros artrópodos, los
cuales constituyen su alimentación; así se les
encuentra bajo corteza de árboles muertos,
interior de madera atacada por otros insectos,
algas varadas en las playas, aves muertas,
excrementos de diversos animales, etc.
En Chile 25 especies repartidas en 14 géne-
ros (Arriagada, 1985, 1986; Mazur, 1988).
Superfamilia STAPHYLINOIDEA
Naomi (1985) efectúa un análisis filogenético
de Staphylinoidea, proponiendo un nuevo es-
quema de clasificación de las categorías supe-
riores y analiza las clasificaciones previamente
conocidas; dicho trabajo reconoce 14 taxa de
nivel familia. Naomi (of. cat.) considera en esta
superfamilia a Clambidae, previamente in-
cluida en Dascilloidea (Crowson, 1955) y Euci-
netoidea (Crowson, 1960, 1967, 1979, 1981;
Lawrence, 1982; Lawrence $e Newton, 1982,
Newton, 1985), dividiendo la tradicional famt
lia Staphylinidae en 3: Oxytelidae, Staphyli-
nidae y Oxyporidae; en esta última incluye a
Pselaphidae. Newton €: Thayer (1988) efec-
túan un análisis crítico del aporte de Naomi,
presentando argumentos en contra de una
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 13
aceptación definitiva del sistema propuesto
por dicho autor, sin un adecuado chequeo del
mismo; en este caso, tomando en cuenta la
validez de las críticas al esquema de Naomi, se
considera en Staphylinoidea a un conjunto de
9 familias, 6 de ellas representadas en nuestro
país.
La clasificación que se considera está basa-
da en los aportes de Crowson (1967, 1981),
Kasule (1966), Lawrence (1982), Lawrence 8c
Newton (1982) y Newton (1985). Hydraeni-
dae es considerada dentro de Hydrophiloi-
dea, a la espera de una mayor discusión acerca
de su correcta posición taxonómica.
Familia PTILIIDAE
La información acerca de hábitat es escasa y la
biología de las especies presentes en Chile es
desconocida; algunas especies se encuentran
asociadas a hongos y se suelen colectar bajo
fecas frescas de vacunos y caballares. Es posi-
ble también colectarlos mediante extracción
de fauna del suelo, utilizando embudos de
Berlese.
Se dan para nuestro país 7 especies ubica-
das en 4 géneros (Blackwelder, 1944a). New-
ton (1985) menciona la presencia de una espe-
cie no descrita del género Cochliarion;, se en-
cuentra en curso una revisión de las especies
de Chile (Colin Johnson, comunicación per-
sonal).
Familia LEIODIDAE
Los adultos se asocian a hongos, hojarasca en
áreas boscosas, bajo corteza de árboles, carro-
ña y en general a materia orgánica en descom-
posición; existen especies con alas reducidas.
Para el territorio nacional se dan 21 géne-
ros con 43 especies (Blackwelder, 1944a; Daff-
ner, 1985; Jeannel, 1957, 1962b; Newton,
1985; Portevin, 1942; Szymczakowski, 1965,
1968, 1970, 1971, 1976), habiendo sido trata-
das muchas de ellas como Camiaridae, Catopi-
dae o Colonidae. El género Hydnobius no es
tratado por Jeannel (1962b), asimismo, este
autor menciona en clave (página 492) a Ma-
crohydnobius que más adelante (página 496)
describe como Neohydnobius. Newton (1985)
menciona la presencia en Chile de algunos
géneros no descritos.
Familia SCYDMAENIDAE
Mayoritariamente en humus en zonas bosco-
sas desde Coquimbo al Sur; también en estepa
fría de altura. Se pueden colectar utilizando
embudos de Berlese.
De acuerdo a Franz (1967, 1980), en nues-
tro país hay 5 géneros y 36 especies.
Familia SILPHIDAE
Los adultos de esta familia frecuentan carro-
ña, encontrándose en áreas abiertas y boscosas
desde Valparaíso a Magallanes. Según revi-
sión reciente (Peck $: Anderson, 1985) en Chi-
le hay dos géneros: Oxelytrum (dos especies) y
Nicrophorus (una especie). Se debe agregar a
Oxelytrum anticola (Guérin), basado en material
procedente de Chapiquiña y Zapahuira (Ta-
rapacá).
Familia STAPHYLINIDAE
Los adultos se suelen colectar en hongos en
descomposición, bajo corteza de árboles, en
musgos, bajo madera en estado de putrefac-
ción, en hojarasca, carroña (por ejemplo,
Creophilus), en general en todo tipo de sustra-
tos que favorezcan el desarrollo de otros artró-
podos o en microambientes que permitan la
acumulación de materia orgánica.
Algunas especies presentan alas reducidas,
existen algunas que son comensales de roedo-
res. La mayoría de las especies se encuentran
distribuidas en áreas boscosas (especialmente
selva valdiviana), presentándose algunas en
áreas litorales (Teropalpus). No se tiene conoci-
miento de que haya sido descrita la larva de
alguna de las especies presentes en Chile.
Incluyendo a Scaphidiidae, de acuerdo a
Kasule (1966), para el territorio nacional se
dan 121 géneros y 424 especies (Ashe ké
Timm, 1988; Ashworth € Hoganson, 1987;
Blackwelder, 1944a, 1952; Coiffait, 1963,
1983; Coiffait €c Sáiz, 1964, 1965a-c, 1966,
1967, 1968, 1969; Hammond, 1976; Herman,
1970, 1975, 1981, 1986; Hoganson € Ash-
worth, 1982; Kistner, 1961; Lóbl, 1983 (Sca-
phidiinae); Newton, 1975, 1982, 1985; Pace,
1986, 1987a-b, 1988; Puthz, 1972, 1983,
1988; Sáiz, 1968a-b, 1969, 1970a-d, 1971,
1972, 1973a-c, 1975, 1976, 1978; Scheerpeltz,
1972; Smetana, 1981; Steel, 1966; Thayer,
14 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
1985, 1987; "Thayer € Newton, 1979; Ullrich,
19754
Familia PSELAPHIDAE
Se distribuyen entre Coquimbo y Magallanes,
en diversos tipos de ambientes boscosos (escle-
rófilo, higrófilo, valdiviano), en humus y hasta
30 a 50 cm de profundidad; otras especies se
encuentran bajo corteza de árboles y en
musgos.
La familia está representada en Chile por
47 géneros y 183 especies (Jeannel, 1962a,
1963, 1964; Philippi, 1887). Newton £:
Chandler (1989) entregan un catálogo mun-
dial de los géneros de esta familia.
Superfamilia EUCINETOIDEA
Grupo integrado por 3 familias (Growson,
1960); una de ellas (Clambidae) es considera-
da por Naomi (1985) dentro de Staphylinoi-
dea, en este caso se sigue lo propuesto por
Crowson. En Chile están representadas las
tres familias.
Familia CLAMBIDAE
Citada como presente en Chile por Ashworth
€ Hoganson (1987), sin identificación al nivel
específico.
Familia EUCINETIDAE
De acuerdo a identificación efectuada por el
Dr. Alfred F. Newton, Jr., a base de material
del Museo Nacional de Historia Natural, la
familia está representada en territorio nacio-
nal por una especie, al parecer no descrita.
Familia SCIRTIDAE
Según la literatura las larvas son acuáticas;
para el caso de las especies presentes en Chile
nada se sabe. Los adultos se encuentran habi-
tualmente en el follaje de diversos árboles y
arbustos.
La representación de esta familia en nues-
tro país, conocida previamente como Cypho-
nidae o Helodidae, comprende 3 géneros y 31
especies; un listado de estos taxa se puede
encontrar en Blackwelder (1944b) y Moroni
(1985b). Se trata de un grupo que requiere un
detallado estudio.
Superfamilia DASCILLOIDEA
De acuerdo a Crowson (1971) en este grupo se
ubican 3 familias, las cuales están presentes en
nuestro país.
Familia DASCILLIDAE
No se dispone de antecedentes biológicos de la
única especie de esta familia que se encuentra
en Chile (Blackwelder, 1944b). Pic (1947) des-
cribe dos especies chilenas, las cuales ubica en
esta familia; los géneros en los cuales ubicó
ambas especies, Eubrianax y Ectopria, pertene-
cen a la familia Psephenidae (véase Brown,
1981).
Familia KARUMIIDAE
Los adultos tienen un vuelo rasante y han sido
colectados en algunas ocasiones en flores de
cactáceas.
Esta familia está representada en Chile por
el género Pleolobus Philippi 8c Philippi, con dos
especies; Blackwelder (1944b) lista ambas es-
pecies bajo el género Anorus LeConte, omi-
tiendo Pleolobus. Los límites de la familia han
sido definidos por Crowson (1971).
Familia RHIPICERIDAE
No se dispone de antecedentes biológicos; al-
gunos ejemplares de la única especie presente
en Chile, Polymertus chilensis (Laporte), han si-
do colectados sacudiendo follaje de guayacán
(Porlieria chilensis).
Superfamilia SCARABAEOIDEA
Las larvas se encuentran en medios que les
proporcionan protección contra la deseca-
ción; los adultos pueden alimentarse de las
mismas sustancias que las larvas o bien utilizar
hojas, néctar o exudado de heridas de árbo-
les, como fuente de alimento. Crowson (1981)
ubica 10 familias en esta superfamilia, una de
ellas (Geotrupidae) es considerada dentro de
Scarabaeidae (Howden, 1982; Howden é
Peck, 1987). Scholtz et al. (1987) proponen
una nueva familia, denominándola Glaresi-
dae. En Chile representadas 6 de las 10 fami-
lias integrantes de este grupo.
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 15
Familia LUCANIDAE
Adultos en general de hábitos crepusculares o
nocturnos; las larvas se encuentran en interior
de madera o en el suelo. Los adultos de mu-
chas especies se pueden encontrar bajo tron-
cos (Pycnosiphorus) o libando los jugos fermen-
tados en las heridas de algunos árboles (Pycno-
siphorus, Chiasognathus). Están presentes en el
área de distribución de las fagáceas, desde la
Región Metropolitana (Alto de Cantillana, La
Ollita: Apterodorcus bacchus) a Magallanes.
Recientemente ha sido descrita una especie
de Sphaenognathus para Chile (S. bidentatus
Adam, 1986); consideramos dudosa la pre-
sencia de un representante de este género en
nuestro territorio ya que las especies conoci-
das se distribuyen en áreas boscosas tropicales.
Para nuestro país se citan, excluyendo a
Sphaenognathus, los géneros: Chiasognathus (5
especies), Streptocerus (1 especie), Pycnosiphorus
(25 especies), Sclerostomus (3 especies), Aptero-
dorcus (1 especie) y Ceratognathus (1 especie);
en resumen 6 géneros y 36 especies (Benesh,
1955, 1956, 1960; Bomans, 1969; Didier $
Seguy, 1953; Lacroix, 1969, 1978; Martínez,
1976a; Numhauser, 1981, 1985; Weinreich,
1958a-b, 1960).
Familia TROGIDAE
Adultos asociados a cadáveres de animales y
desechos de ellos; aparentemente cualquier
resto orgánico animal les es atractivo, existien-
do también registros de encuentros en nidos
de aves y roedores (Vaurle, 1962).
Según revisión reciente del único género
presente en Chile, Polynoncus de acuerdo a
Scholtz (1986), se citan como presentes en te-
rritorio nacional a 16 especies (Vaurie, 1962:
como Trox); 6 de ellas son señaladas como de
“Chile”, sin localidad exacta, las cuales posi-
blemente no se encuentran en nuestro país.
Pittino (1987) describe P. mirabilis menciona-
da en el respectivo resumen como de Chile; el
material base de la descripción de esta especie
proviene de Santiago Perón, localidad sin du-
da de la República Argentina, razón por la
Cual no es considerada en el recuento de espe-
cies presentes en Chile.
Familia CERATOCANTHIDAE
La biología de las especies presentes en Chile
es prácticamente desconocida; los adultos se
encuentran bajo excremento de diversos ani-
males y también asociados a detritus orgánico
vegetal, en hojarasca o bajo corteza de árboles.
Suelen ser atraídos a la luz y por cebos de
animales muertos; algunos ejemplares pue-
den ser colectados ocasionalmente por extrac-
ción de fauna del suelo (embudo Berlese-
Tullgren) y por el uso de trampas Barber y
Malaise.
La familia es denominada Acanthoceridae
por algunos autores (2.e. Crowson, 1955,
1981); los representantes sudamericanos han
sido objeto de una revisión reciente (Paulian,
1982). En Chile hay 4 especies repartidas en 2
géneros.
Familia HYBOSORIDAE
No existen antecedentes biológicos, ni conoce-
mos la única especie chilena que, de acuerdo a
la literatura, se ubicaría en esta familia.
Familia GLAPHYRIDAE
Los adultos visitan flores, generalmente de
compuestas y cactáceas; su época de vuelo
fluctúa entre mediados de setiembre a fines de
diciembre, con actividad preponderantemen-
te matinal (Gutiérrez, 1943). En Chile: 2 géne-
ros con 11 especies.
Familia SCARABAEIDAE
Repartidos en todo el territorio nacional. Los
adultos se pueden hallar en flores, follaje de
diversas plantas o asociados a excrementos de
animales; muchas especies son atraídas a la
luz. Las larvas se desarrollan en el suelo o en
interior de madera en proceso de descomposi-
ción; algunas especies, al presentarse en gran-
des cantidades, son perjudiciales a árboles y
cultivos, motivo por el cual han sido conside-
radas plagas (Durán, 1963; González et al.,
1973
Cabe destacar a los representantes del gé-
nero Bolborhinum, con 6 especies en Chile
(Martínez, 1976b), que construyen galerías
hasta de 69 cm de profundidad, donde se
desarrollan las larvas. Adultos de la especie
Frickius variolosus excavan galerías bajo la
fuente de alimento (fecas); en cambio los de
Taurocerastes patagonicus lo hacen cerca de la
16 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
fuente de alimento; en este último se observa
un transporte del bolo de feca utilizando sus
patas delanteras y retrocediendo, a diferencia
de lo anotado para Megathopa villosa la cual lo
hace utilizando los pares de patas medias y
posteriores y también retrocediendo (Ovalle
8c Solervicens, 1980). Se ha sugerido que el
braquipterismo de la especie T. patagonicus, es
una resultante de las condiciones ambientales
imperantes en la zona en que habita (Zunino,
1984).
Tanto Taurocerastes como Frickius han sido
ubicados en la familia Ochodaeidae (Crowson,
1981) o Geotrupidae (Lawrence, 1982; Zuni-
no, 1984). Howden (1982) al describir la larva
de F. variolosus concluye que se trata de Geo-
trupini (Sciirabaeidae), posición que es mante-
nida con posterioridad (Howden $ Peck,
1987) al ser descrita la larva de T. patagonicus.
Esta familia es una de las más diversificadas
en nuestro país, contando con 181 especies
ubicadas en 51 géneros (Blackwelder, 1944b;
Campos éc Peña, 1973; Endródi, 1977; Gutié-
rrez, 1946, 1947, 1949, 1950a-b, 195la-b,
1952; Martínez, 1951, 1953, 1956, 1957,
1959, 1972a-b. 1974, 1975).
Superfamilia BYRRHOIDEA
De acuerdo a Crowson (1981) incluye sólo la
familia Byrrhidae, con representantes que se
distribuyen mayoritariamente en ambientes
temperados y con larvas que se alimentan de
musgos, líquenes y otros vegetales (Lawrence,
1982).
Familia BYRRHIDAE
Nada se conoce acerca de la biología de las
especies presentes en Chile. De acuerdo al
material de la colección del Museo Nacional
de Historia Natural, la familia se distribuye en
nuestro territorio desde Coquimbo a Magalla-
nes; hay descritos 2 géneros y 2 especies.
De la lista de especies entregada previa-
mente (Moroni, 1985b) se debe eliminar a By-
rrhocerus newmani Bréthes, especie la cual ha
sido transferida a la familia Anobiidae (White,
19/72)
Superfamilia DRYOPOIDEA
Grupo constituido por 9 familias; algunos au-
tores incluyen también la familia Callirhipidae
(Lawrence € Newton, 1982) la cual Crowson
(1973, 1981) considera perteneciente a la su-
perfamilia Artematopoidea; en Chile presen-
tes 4 familias.
Familia PSEPHENIDAE
Larvas de hábitos acuáticos. Se encuentran
apegadas al sustrato y son de aspecto crusta-
ceiformes; adultos similares en aspecto a algu-
nas especies de Scirtidae, de hábitos crepuscu-
lares, asociados a follaje, suelen ser atraídos a la
luz. Para Chile se ha descrito la larva de una
especie, tentativamente asignada a la especie
Tychepsephus felix Waterhouse (Artigas, 1963);
esta misma especie es listada por Moroni
(1985b) como la única de esta familia presente
en el país; a ésta se deben agregar dos especies
descritas por Pic (1947, como Dascillidae). En
Chile 3 géneros con una especie cada uno; la
clasificación de subfamilias y géneros es entre-
gada por Brown (1981).
Familia ELMINTHIDAE
Larvas y adultos de hábitos acuáticos, estos
últimos no nadadores. De la lista de especies
presentes en Chile (Moroni, 1973, 1958b) se
debe eliminar la especie Elmis condimentarius
(actualmente ubicada en el género Austrelmas)
la cual, según su descriptor (Philippi, 1864;
página 96) “Vive en riachuelitos de los Andes
peruanos”. Brown (1984) crea el género Aus-
trelmis e incluye en éste a: A. anthracina (Ger-
main), chilensis (Germain), costulata (Janssens),
elegans (Janssens) y woytkowskúu (Hinton); estas
especies son listadas por Moroni (of. cit.) en los
géneros Elmis, Elsianus y Macrelmas.
De acuerdo a los antecedentes, en Chile se
encuentran 5 géneros y 12 especies. No se
incluye en estas cifras a Macrelmis germami
(Grouvelle) y Austrelmis condimentaria (Philip-
pi), citadas para Chile por Germain (1911) y
Moroni (1985b); la presencia en Chile de estas
especies necesita ser confirmada.
Hinton (1965) cita como presente en Chile
a Austrolimnius elatus Hinton; no conocemos la
descripción de esta especie, razón por la cual
no es considerada en este aporte.
Familia DRYOPIDAE
Recientemente ha sido incluida en la sinoni-
mia de esta familia aquella descrita por Dajoz
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 17
(1973) como Chiloeidae (Lawrence, 1982) y el
género Chiloea Dajoz, ubicado en la sinonimia
de Sosteamorphus Hinton (Spangler, 1987); al
listado de especies entregados por Moroni
(1985b) se debe agregar a Sosteamorphus chilen-
sis (Dajoz), especie para la cual se han publica-
do algunos antecedentes biológicos y de distri-
bución (Solervicens, 1974). En Chile: 2 géne-
ros y 3 especies.
Familia LIMNICHIDAE
Representación en nuestro país basada en
identificaciones efectuadas por Philibert Ger-
main, material presente en la colección del
Museo Nacional de Historia Natural (como
Limnichus, im hitteris); identificación a nivel de
familia confirmada por el segundo de los au-
tores de este trabajo.
Familia HETEROCERIDAE
De acuerdo a Peña (1987) los adultos se en-
cuentran en lugares húmedos, bajo arena o
barro en bordes de cuerpos de agua, siendo
atraídos a la luz. En Chile 2 géneros y 2 espe-
cies (Pacheco, 1964).
Superfamilia BUPRESTOIDEA
Grupo que presenta acentuada especializa-
ción, tanto a nivel de larvas como de adultos;
incluye sólo una familia, la cual se encuentra
regularmente diversificada en nuestro terri-
torio.
Familia BUPRESTIDAE
Los adultos de la mayoría de las especies exhi-
ben colores llamativos. Frecuentan las flores y
follaje de diversos vegetales; en zonas áridas es
posible encontrarlos bajo la fronda de vegeta-
les achaparrados. Las larvas se desarrollan en
el interior de madera y también bajo corteza
(Epistomentis), habiendo sido descritas algunas
de ellas (Moore, 1986; Moore €: Cerda, 1986).
En el territorio nacional están representa-
dos por 21 géneros y 67 especies (Blackwel-
der, 1944b; Cobos, 1954, 1955, 1956a-c,
ITALO b 11902 MALOS, 1975) 1978;
1980, 198la-b, 1986; Kogan, 1960, 1964;
Moore, 1981, 1985, 1986, 1987; Obenberger,
1958b; Olave, 1954a-b). No se incluye en estas
cifras a Ancylotela oculata Waterhouse citada
para Chile por Cobos (1973) ni a dos especies
del género Halecia, citadas para nuestro país
por Obenberger (1958a).
Superfamilia ELATEROIDEA
Crowson (1981) agrupa a cuatro familias, pre-
sentes en Chile. De acuerdo a Lawrence
(1982) se incluye en este grupo a Cerophy-
tidae.
Familia CEBRIONIDAE
Representada en Chile por Stenocebrio coquim-
bensis Solervicens, la cual está restringida en su
distribución a la zona de Coquimbo (Solervi-
cens, 1988a). Esta especie se encuentra tam-
bién en Valparaíso y Santiago; los adultos son
atraídos a la luz.
Familia ELATERIDAE
Adultos preferentemente en follaje, también
bajo troncos, piedras y plantas achaparradas;
con larvas libres, subterráneas y también en
madera en proceso de descomposición. En
Chile 44 géneros y 106 especies (Blackwelder,
1944b, 1957; Costa, 1975; Golbach, 1953,
1969, 1970a-b, 1979, 1983 a-b; González et al.,
1973; Philippi, 1887; Stibick, 1971, 1978); se
incluye en esta cifra a Chalcolepidius erythroloma
Candéze, cuya presencia en nuestro país es
dudosa.
Familia THROSCIDAE
Estaría presente en Chile con una especie que
se encuentra en estudio (Luis Peña, comunica-
ción personal).
Familia EUCNEMIDAE
Los adultos llegan a la luz en zonas boscosas o
cercanas a ellas, durante la estación climática-
mente favorable. En nuestro país 4 géneros y 6
especies, tratados previamente en una revi-
sión (Cobos, 1968).
Superfamilla CANTHAROIDEA
La composición de familias ha sido definida
por Crowson (1972), trabajo en el cual entrega
claves para el reconocimiento de adultos y pa-
ra la separación de larvas de 6 de las 9 familias
incluidas en este grupo; además entrega una
18 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
clave de subfamilias de Lampyridae, basada
en machos. En Chile presentes 4 familias.
Familia LYCIDAE
Pic (1942a, páginas 153-154) describe la espe-
cie Calopteron chilenum para nuestro país (Lyci-
nae-Calopterini); considerando la distribu-
ción netamente tropical de esta familia, esti-
mamos improbable la presencia de esta espe-
cie en Chile y posiblemente se trate de un
error en la etiquetación del ejemplar que sir-
vió de base para la descripción (como en el
caso de Sphaenognathus en Lucanidae) y por lo
cual debe ser eliminada de la entomofauna
chilena.
Familia PHENGODIDAE
Los adultos son atraídos a la luz y también
pueden ser capturados mediante el empleo de
trampa Malaise; no existen antecedentes bio-
lógicos de las 16 especies presentes en Chile,
repartidas en 4 géneros (Blackwelder, 1945;
Wittmer, 1956, 1963, 1976, 1986).
Se debe hacer notar que Wittmer (1963)
indica como especie tipo de Mastinocerus Solier
(1849) a M. texanus LeConte, siendo que Solier
incluye en su género sólo a la especie M. brevi-
penmis Solier. De acuerdo a las disposiciones
del Código Internacional de Nomenclatura
Zoológica, la especie tipo de Mastinocerus So-
lier debe ser, por monotipia, M. brevipennis
Solier.
Familia LAMPYRIDAE
Los adultos se encuentran preferentemente
en ambientes sombríos, en el follaje de diver-
sas plantas o volando a poca altura; las larvas
en hojarasca, bajo corteza y piedras.
McDermott (1960) efectúa una revisión del
género Pyractonema, nombre que es sustituido
con posterioridad (McDermott, 1964) por Py-
ractena; finalmente el mismo autor (McDer-
mott, 1966) considera válido Pyractonema Oli-
vier (= Pyractena, McDermott). En Chile se
encuentran 4 géneros y 18 especies: Lucidota
Laporte (2 especies), Pyractonema Olivier (12
especies), Vesta Laporte (2 especies) y Cladodes
Solier (2 especies).
Familia CANTHARIDAE
De amplia distribución en Chile, encontrán-
dose en todo tipo de ambientes. Frecuentes en
flores y follajes, especialmente en el período
de primavera, pudiendo alcanzar grandes
densidades. En nuestro país 12 géneros y 63
especies (Ashworth 8: Hoganson, 1987; Black-
welder, 1945; Wittmer, 1945, 1948, 1949,
1950, 1957, 1961, 1969, 1980). Brancucci
(1980) propone un nuevo esquema de subfa-
milias y cita los géneros incluidos en cada una
de ellas.
Superfamilia DERMESTOIDEA
Debido a la inclusión de la familia Dermesti-
dae en Bostrichoidea, por parte de algunos
autores, el grupo de familias restantes están
englobadas en la superfamilia Derodontoidea
(Lawrence 8 Newton, 1982); en este caso se ha
seguido el esquema de familias entregado por
Crowson (1959, 1981). Dos familias presentes
en Chile.
Familia DERODONTIDAE
Habitantes de áreas boscosas húmedas, larvas
y adultos se alimentan de varios tipos de hon-
gos y productos del metabolismo de éstos; res-
pecto de las especies chilenas, 1 género con 3
especies, no hay datos concretos (Lawrence,
1985; Lawrence 8 Hlavac, 1979).
Familia DERMESTIDAE
Asociados preferentemente a materia orgáni-
ca en descomposición; algunas especies viven
normalmente sobre materia animal o sustan-
clas que contengan proteínas de origen ani-
mal, pudiendo también desarrollarse sobre
determinadas sustancias vegetales, otras viven
exclusivamente en cereales y granos. Las lar-
vas cuando han llegado a su total desarrollo
buscan un lugar tranquilo en donde poder
efectuar la pupación, perforando e inutilizan-
do a veces diversos materiales que no ocupan
en su alimentación (Plata-Negrache, 1972).
De la lista de especies dadas para Chile (Mo-
roni, 1975a) se debe excluir los géneros Dion-
tolobus y Decamerus traspasados a la familia Pel-
tidae, dentro de Cleroidea (Crowson, 1964).
. Blackwelder (1945) cita a Diodontolobus (¡sic!)
lateritius Fairmaire y D. punctipennas Solier den-
tro de Dermestidae (Incertae sedis, página 398)
y también en Ostominae (como Diontolobus,
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 19
página 395); lo mismo ocurre con el género
Decamerus, citado en página 395 como Ostomi-
nae y en página 396 como Dermestidae. En
conclusión, en nuestro país se encontrarían
presentes 5 géneros y 15 especies de dermés-
tidos. ñ
Superfamilia BOSTRICHOIDEA
Lawrence € Newton (1982) incluyen en esta
superfamilia a la familia Dermestidae. Crow-
son (1981) estima que Ptinidae se debe incluir
en Anobiidae; en este caso se ha adoptado lo
propuesto por Lawrence (1982) en el sentido
de tratar a Ptinidae como una categoría válida,
considerando a este grupo compuesto por 3
familias las cuales están representadas en
Chile.
Familia BOSTRICHIDAE
Especies xilófagas, en madera seca; adultos de
algunas especies se pueden encontrar bajo
corteza (Polycaon), suelen ser atraídos a la luz
(Chilenius, Polycaon). Se conocen antecedentes
de la biología de Polycaon chilensis Erichson
(Solervicens 8: Vivar, 1976).
Familia representada en Chile por 10 géne-
ros y 14 especies (Blackwelder, 1945; Cortés ¿e
Isla, 1964; Olalquiaga, 1949b, 1962; Vry-
dagh, 1956); no se incluye en este recuento a
una especie del género Lyctus (L. chilensis Ger-
berg), la cual es mencionada en la literatura
(Olalquiaga, 1958; Santoro, 1960) y cuya des-
cripción no ha podido ser ubicada. Claves pa-
ra larvas y adultos, a nivel de subfamilia e
incluyendo a Lyctinae, se encuentran en un
aporte de Crowson (1961). Lyctinae ha sido
considerada de nivel familia (Gerberg, 1957;
Santoro, 1960) (véase página 60).
Familia ANOBIIDAE
De hábitos xilófagos, pueden ser atraídos a la
luz; adultos de algunas especies se pueden
encontrar en follaje de diversos vegetales y en
hongos.
Aun cuando existen algunas revisiones y
descripciones recientes de algunos taxa, más
de la mitad de las especies no han sido estudia-
das desde la época de sus descripciones origl-
nales; el panorama no es del todo claro y qui-
zás muchas de las especies deban ser agrupa-
das en géneros distintos al que fueron asigna-
das originalmente. Aproximadamente 22 gé-
neros y 77 especies dadas para nuestro territo-
rio (Blackwelder, 1945: Español, 1971; Espa-
ñol $ Comas, 1988; Valdés, 1982; White,
1971, 1972, 1974, 1980).
Familia PTINIDAE
Algunas especies se encuentran en follaje, lo
que hace presumir que se alimentan de mate-
ria orgánica vegetal; otras se encuentran aso-
ciadas a la actividad humana (productos alma-
cenados, habitaciones).
No existe una revisión global de las especies
chilenas, sin duda muy necesaria para clarifi-
car la taxonomía de las especies. Pic (1950)
describe el género Chilenogenius para incluir la
especie Trigonogentus aeneus Pic; basado en es-
te trabajo y en la lista de especies entregada
por Blackwelder (1945), en Chile hay 4 géne-
ros y 21 especies.
Superfamilia CLEROIDEA
La composición de familias de este grupo y los
límites de cada una de ellas, han sido detalla-
das en varios trabajos (Crowson, 1964, 1966,
1970). Bajo esta superfamilia se agrupan 9
familias, de las cuales hay presentes en Chile 4
de ellas.
Familia PELTIDAE
Los adultos se encuentran en flores de diver-
sas plantas. A las especies que figuran en el
aporte de Blackwelder (1945) bajo Diontolobus
y Decamerus se agregan dos especies de Ant-
xoon descritas por Pic (1944) y una de Rento-
nium descrita por Crowson (1970). En relación
al género Antixoon, Crowson (1964, página
291) lo cita como solamente de América Cen-
tral, incluyéndolo en Decamerinae; posible-
mente las especies descritas por Pic estén ge-
néricamente mal asignadas. En resumen, en
Chile se encuentran 10 especies ubicadas en 4
géneros.
Familia TROGOSSITIDAE
Según Peña (1987, como Ostomidae) la mayo-
ría de las especies son predadoras, encontrán-
dose las larvas y adultos bajo corteza, en hon-
gos leñosos y vegetales secos; a nivel específico
20 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
no se conocen antecedentes precisos. Una lar-
va del género Acalanthis, encontrada bajo un
tronco de Araucaria y con fragmentos de in-
sectos en el estómago, ha sido descrita por
Crowson (1970); la misma había sido asignada
previamente (Crowson, 1964) al género Pha-
nodesta.
En Chile se encuentran presentes los géne-
ros Acalanthis (3 especies), Corticomus (1 espe-
cie), Tenebroides (1 especie) y Phanodesta (7
especies); el último de ellos es de carácter neta-
mente insular (islas Juan Fernández, San Am-
brosio y San Félix).
Familia CLERIDAE
La mayoría de las especies, en estado larval y
como adultos, son activos predadores; los
adultos de los géneros Epaclines, Calendyma y
Soleruicensia son por el contrario polinifagos.
Las larvas pueden ser de vida libre encontrán-
dose en el follaje (Eurymetopum) o bien en el
interior de madera (Vatalis, Corinthiscus, Noto-
cymatodera), alimentándose de insectos xilófa-
gos; las especies de Necrobia (2 especies intro-
ducidas) se encuentran en materia orgánica
animal, tal como cadáveres o charqui (Jaime
Solervicens, comunicación personal).
En Chile presentes los géneros Monophylla
(1 especie), Calendyma (2 especies), Epiclines (4
especies), Notocymatodera (2 especies), Natalis
(5 especies), Eurymetomorphon (1 especie), In-
humeroclerus (1 especie), Chalioclerus (1 especie),
Corinthiscus (2 especies), Cregya (1 especie),
Neopylus (1 especie), Solervicensia (6 especies),
Necrobia (2 especies), Eurymetopum (26 espe-
cies), Silviella (3 especies) y 3 especies asigna-
das a Eurymetopum en nomina dubra (Jaime So-
lervicens, comunicación personal). Blackwel-
der (1945) cita erróneamente Eprclines semme-
tallica F. € G., la cual ubica posteriormente
bajo el género Acalanthis en la familia Trogos-
sitidae (Blackwelder, 1957).
Existen revisiones recientes para los géne-
ros Efpriclines, Natalis, Eurymetopum y Silwnella
(Solervicens, 1973a, 1973b, 1986 y 1987a, res-
pectivamente); con posterioridad a la revisión
de Natalis, se le agregan dos nuevas especies
(Solervicens,1976). Recientemente se ha efec-
tuado (Solervicens, 1987b) un análisis filoge-
nético para las especies de Eurymetopum. El
género Solervicensia ha sido creado (Barr,
1979) para recibir las especies anteriormente
ubicadas en Korynetes y Lebasiella, taxa no re-
presentados en Chile. La especie Monophylla
pallipes Schaeffer es reportada para nuestro
país por Solervicens (1988b); este mismo au-
tor describe (Solervicens, 1989) un nuevo gé-
nero y especie de Enopliinae para Chile, Neo-
pylus nahuelbutensis. En resumen 15 géneros y
61 especies citadas para Chile.
Familia MELYRIDAE
Los adultos de esta familia se encuentran
usualmente en flores. No existen revisiones
recientes de los taxa presentes en Chile y el
conocimiento del grupo sólo se limita a las
descripciones originales; según Blackwelder
(1945, 1957) se encuentran en nuestro país 4
géneros con 64 especies, una gran proporción
de ellas descritas por Maurice Pic, de interven-
ción desafortunada si se toma en cuenta el
análisis de su aporte en otros grupos (véase
por ejemplo Solervicens, 1986), razón por la
cual se estima que revisiones modernas harán
variar estas cantidades.
En Chile se encuentran representados los
géneros Astylus (3 especies), Arthrobrachus (19
especies), Dasytes (28 especies), Amecocerus (14
especies) y Brachidia (2 especies); Blackwelder
(1945) no cita la especie Brachidia gallerucoides
Germain (1855, página 395) y cita en Mala-
chiinae a Nematocerus incertus Solier, especie
esta última ubicada en la actualidad en la fami-
lia Scraptiidae (como Nemacerus).
Superfamilia LYMEXYLOIDEA
Crowson (1981) incluye en este grupo, ade-
más de Lymexylidae, a la familia Stylopidae
(Strepsiptera auctt.), que previamente había
considerado en una superfamilia separada
(Crowson, 1955). Lawrence € Newton (1982)
consideran la posición de Streptisera no del
todo clara; en este aporte dicho grupo es trata-
do separadamente.
Familia LYMEXYLIDAE
Los adultos son de vuelo rasante y lento, des-
plazándose con el abdomen curvado hacia
arriba; es posible observarlos en el crepúsculo,
posados en el ápice de hierbas del sotobosque.
Peña (1987) menciona la postura de huevos en
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 91
hendiduras de maderas y que los adultos son
atraídos a la luz.
Blackwelder (1945) menciona dos especies
para nuestro país, de las cuales la cita de Atrac-
tocerus brasiliensis L. 8c S. es sin duda un error;
esta especie no es mencionada por Wheeler
(1986) para Chile.
Superfamilia CUCUJOIDEA
Cucujoidea (sensu lato) ha sido tradicional-
mente dividida en dos secciones: Clavicornia y
Heteromera (Crowson, 1955, 1981), actual-
mente (Lawrence, 1982; Lawrence € Newton,
1982; Watt, 1982) ambas secciones consti-
tuyen las superfamilias Cucujoidea y Tene-
brionoidea, respectivamente, y así son trata-
das en este aporte. Existen importantes y re-
cientes avances respecto a la sistemática de
ambas superfamilias, destacándose el recono-
cimiento de varios grupos con distribución
restringida al hemisferio Sur (Lawrence e
Newton, 1982).
Familia NITIDULIDAE
Comprende insectos fitófagos o predadores;
se encuentran en flores, savia fermentada que
mana de las heridas de diversas plantas, fru-
tos, bajo corteza de árboles, en hongos o pre-
dando sobre carroña (Nitidulinae) y cóccidos
(Cybocephalus).
- Según nuestros registros en Chile se en-
- cuentran 19 géneros y 43 especies (Blackwel-
derrito. Gillogly, 1952), 1955... Jjelíneck,
1979, 1982; Olalquiaga, 1962; Prado, 1987);
existe una clave disponible para identificar las
especies del género Carpophilus, presentes en
el territorio nacional (Prado, 1987).
Familia RHIZOPHAGIDAE
Muy poco se sabe de los hábitos de la especies
presentes en nuestro país; adultos han sido
colectados bajo corteza de árboles y en humus.
En Chile 2 géneros y 4 especies, las que han
sido listadas por Blackwelder (1945) bajo Cu-
cujidae-Monotominae, subfamilia esta que es
ubicada por Crowson (1955) en Rhizopha-
gidae.
Familia PROTOCUCUJIDAE
Se distribuyen desde Coquimbo a Aisén, en-
contrándose en el follaje de diversos árboles,
especialmente del género Nothofagus en la zo-
na Sur. La familia fue creada para la especie
chilena Protocucujus chilensis Crowson (1955),
ubicada en la actualidad en el género Ericmo-
des Reitter (Crowson, 1967); en Chile un géne-
ro y 3 especies.
Familia SPHINDIDAE
La primera cita de la presencia de esta familia
en Chile corresponde a Crowson (1955),
quien hace mención de un género y especie no
descrita; Sen Gupta 8: Crowson (1979) descri-
ben este nuevo género y especie, ubicándolo
bajo una subfamilia propia (Protosphindinae).
Recientemente Burakowski 8 Slipinski (1987)
describen una larva asignándola a la especie
Protosphindus chilensis Sen Gupta € Crowson,
debido al hecho de haberse encontrado larvas
y adultos juntos; en este mismo aporte descri-
ben una segunda especie del mismo género.
Ambas especies se encuentran representadas
en la colección del Museo Nacional de Historia
Natural; el material correspondiente a la pri-
mera de ellas porta una tarjeta de identifica-
ción de Philibert Germain como “Glyptolopus
chilensis P. G. inéd.”, el cual es un nombre no
publicado.
Familia CUCUJIDAE
Los adultos se encuentran bajo corteza de ár-
boles; según registros de colecta de la única
especie presente en Chile, se distribuye entre
los 3330" y 41930" lat. S. Crowson (1955) indi-
ca que las larvas de Catogenus, género en el
cual se ubica la especie chilena, predan larvas
de otros coleópteros lignícolas.
La subfamilia Passandrinae, en la cual se
ubica Catogenus, ha sido considerada de nivel
familia (Crowson, 1955) con estrecha relación
a Cucujidae (Crowson, 1973a). Slipinski
(1983) le asigna el rango de subfamilia dentro
de Cucujidae, con posterioridad trata a este
grupo como una entidad de nivel familia (Sli-
pinski, 1987); en espera de una mayor discu-
sión en relación a esta problemática, se consi-
dera como de nivel subfamilia. El resto de las
especies chilenas consignadas por Blackwel-
der (1945) bajo esta familia, se encuentran en
la actualidad ubicadas en Silvanidae y Rhizo-
phagidae.
22 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Familia PHLOEOSTICHIDAE
Antecedentes de distribución para la única
especie presente en Chile, son entregados por
Cekalovié (1976); los adultos de esta especie se
encuentran asociados a follaje de Nothofagus
en la selva valdiviana.
La familia fue creada (Sen Gupta € Crow-
son, 1969a) para incluir especies holárticas,
neozelandesas y una de Chile, previamente
incluidas en Boganiidae (Sen Gupta € Crow-
son, 1966); con posterioridad (Crowson,
1973a) se efectúa una revisión de esta familia.
Sen Gupta € Crowson (1969a) describen la
larva de la especie chilena, de hábitat descono-
cido; respecto a esta especie ha sido ubicada en
Oedemeridae (Arnett, 1951; Blackwelder,
1945; Fairmaire € Germain, 1863; Lacordai-
re, 1859) y considerada, con dudas, como Py-
thidae (Crowson, 1955).
Familia SILVANIDAE
De acuerdo a Peña (1987, como Cucujidae),
adultos y larvas se encuentran bajo corteza de
árboles predando sobre otros insectos; esto se
refiere al género Uleiwta. Una fracción impor-
tante de las especies presentes en Chile han
sido introducidas y afectan granos y produc-
tos almacenados. Los representantes de esta
familia se distribuyen a lo largo de todo el
territorio nacional.
Inicialmente, basado en caracteres de adul-
tos, Crowson (1955) distingue dos subfami-
lias: Psammoecinae y Silvaninae; con posterio-
ridad (Crowson, 1973a) agrega a Uleiotinae
(ubicada anteriormente en Cucujidae), posi-
ción que es mantenida en la actualidad (Crow-
son, 1981: como Hyliotinae; Slipinski, 1983).
En nuestro país se encuentran representa-
dos los géneros Uleiota (2 especies), Ahasverus
(1 especie), Oryzaephilus (2 especies), Cryptoles-
tes (3 especies), Silvanus (1 especie), Amydropa
(1 especie), Pseudochrodes (1 especie) y Crypta-
morpha (2 especies); en este último género se
considera a Parabrontes redtenbacheri Reitter,
especie considerada de ubicación problemáti-
ca por Thomas (1984).
La presencia en nuestro territorio de las
especies de Cryptolestes y de Oryzaephilus merca-
tor Fauvel es reportada por Arias 8 Dell'Orto
(1983); Silvanus unidentatus (Olivier) ha sido
mencionado por Halstead (1973); Ahasverus
advena (Waltl) es citada para Chile por Olal-
quiaga (1962) y Cryptamorpha desjardinsi (Gué-
rin) es citada para Isla de Pascua por Campos
8c Peña (1973, como Psammoecus (Cryptamorpha)
desjardinsi). Oryzaephilus surinamensis (Lin-
naeus) es conocida en Chile desde comienzos
de este siglo y su importancia reconocida en la
literatura (Arias $ Dell'Orto, 1983; Durán,
1963; González et al., 1973; Porter, 1913b).
Familia CAVOGNATHIDAE
No existen antecedentes biológicos para el
único representante chileno; algunas especies
extranjeras han sido encontradas en nidos de
aves (Watt, 1980).
La familia fue propuesta por Sen Gupta €c
Crowson (1969a) para incluir taxa de Austra-
lia, Nueva Zelanda y Chile; Crowson (1973a),
agrega otro género de Nueva Zelanda. Se tra-
ta, en consecuencia, de una familia de distri-
bución austral. |
Familia CRYPTOPHAGIDAE
Asociados a suelo, hongos y también en fo-
llaje; las especies de Crytophagus usualmente se
alimentan de hongos, encontrándose en todos
aquellos sustratos que favorecen el desarrollo
de ellos, incluyendo productos almacenados
(Sen Gupta, 1980).
En relación a las especies chilenas listadas
por Blackwelder (1945) en Telmatophilinae,
fueron transferidos a la familia Languriidae 4
géneros con un total de 14 especies (Loboster-
num, Loberus, Loberoschema y Toramus; Crow-
son, 1955) y a la familia Cavognathidae un
género monoespecífico (Taphroptestes; Sen
Gupta € Crowson, 1969a).
En la actualidad esta familia se encuentra
representada en Chile por 6 géneros y 18 es-
pecies (Blackwelder, 1945; Cryptophagidae-
Cryptophaginae; Bruce, 1943; Crowson,
1955; Sen Gupta € Crowson, 1969a).
Familia BIPHYLLIDAE
Abdullah € Abdullah (1966) consideran a esta
familia, junto a Byturidae, como pertenecien-
tes a la sección Heteromera (Tenebrionol-
dea); en este caso se sigue la opinión de Crow-
son (1981).
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 93
No existen antecedentes biológicos de las
especies presentes en nuestro territorio; al pa-
recer se encuentran asociadas a suelo.
Germain (1855, páginas 395 a 396) crea el
género Philophlaeus para ubicar dos especies
nuevas (aeneus y oblongus), una de las cuales se
encuentra actualmente ubicada en el género
Loberoschema Reitter, 1896 (Languriidae) y la
otra en el género Diplocoelus Reitter, 1877
(Biphyllidae), lo cual crea un problema no-
menclatural ya que ambas categorías genéri-
cas fueron descritas con posterioridad a la
contribución de Germain, desconociéndose la
prioridad de Philophlaeus (omitido en el catálo-
go de Blackwelder, 1945). La familia está re-
presentada en Chile por un género con tres
especies.
Familia LANGURIIDAE
Algunas especies se encuentran asociadas a
flores de diversas plantas. Los géneros presen-
tes en Chile son: Lobosternum (1 especie), Lobe-
rus (8 especies), Loberoschema (4 especies) y To-
ramus (1 especie).
Sen Gupta € Crowson (1971) efectúan una
revisión de la clasificación de esta familia; el
esquema de subfamilias y tribus se puede en-
contrar también en un aporte posterior (Sen
Gupta 8 Mukherjee, 1979).
Familia EROTYLIDAE
Se encuentran asociados a hongos; algunas
especies frecuentan el exudado de heridas
de Nothofagus. En Chile 7 géneros con 9 espe-
cies (Blackwelder, 1945; Guérin, 1952).
Familia CERYLONIDAE
Adultos del género Murmidius se encuentran
hasta 1.800 metros de altitud, en hormigueros
de Camponotus.
La composición taxonómica que se entrega
está basada en el aporte de Crowson (1955);
en nuestro país 2 géneros y dos especies.
Familia CORYLOPHIDAE
Sin antecedentes biológicos de las especies
presentes en Chile; algunos ejemplares se han
colectado en hojarasca.
En Chile 4 géneros y 4 especies, de acuerdo
a Blackwelder (1945, página 431, como Or-
thoperidae).
Familia COCCINELLIDAE
Insectos muy utilizados en control biológico,
por ser de hábitos predadores; muchas de las
especies que se encuentran actualmente en
nuestro país corresponden a introducciones
efectuadas con este fin.
Tomando como referencia el catálogo de
Blackwelder (1945), los aportes taxonómicos
recientes (Chapin, 1969; Gordon, 1974, 1977,
1978, 1980, 1982; Gordon €: Anderson, 1979;
Gordon 8 Chapin, 1983; Hofmann, 1970a-b,
1972; Mader, 1957) y aquellos relacionados
con el control biológico (Aguilera, 1970; Agui-
lera 8 Díaz, 1983; González 8 Rojas, 1966;
Quiroz, 1983; Rojas, 1966; Zúñiga, 1985; Zú-
ñiga et al., 1986a-b), se encuentran presentes
en Chile 33 géneros y 76 especies. Se incluyen
en esta cifra a un conjunto de especies descri-
tas O citadas para Chile, omitidas en el aporte
de Blackwelder (1945), las cuales son: Cepha-
loscymnus porteri y Nothorhyzobius porteri de
Bréthes (1925), Cryptolaemus montrouzieri Mul-
sant y Rodolía cardinalis Mulsant, mencionadas
por Cortés (1940), Hyperaspis festiva Mulsant
presente en Chile de acuerdo a Bosq (1943),
Coccidophilus citricola Bréthes citada por Porter
(1913a). Pseudadomia chiliana descrita por
Timberlake (1943) es considerada por Chapin
(1969) como una subespecie de Pseudadonia
fuluipennis (Mulsant).
También se incluyen en la cantidad antes
mencionada, a las especies Curinus coeruleus
Mulsant, Dioria sordida Mulsant y Dapoha de-
glandi Mulsant cuya presencia en Chile es du-
dosa. Se excluye a Azya luterpes Mulsant (= Azya
pontbriantt Mulsant) la cual de acuerdo a Gor-
don (1980) no se encuentra en el país; todas
estas especies son citadas para Chile por
Blackwelder (1945).
Un nuevo esquema de subfamilia, tribus y
géneros que integran estos taxa ha sido entre-
gado, a nivel mundial, por Sasaji (1968).
Familia MEROPHYSIIDAE
Los adultos se encuentran asociados a humus
o detritus vegetal. De nivel familia a partir de
Crowson (1955), incluye las subfamilias Holo-
paramecinae y Merophysiinae.
24 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Los únicos géneros presentes en Chile son
Holoparamecus (3 especies) e Hyplathrinus (1
especie); las especies han sido listadas previa-
mente (Moroni, 1975b; como Lathridiidae-
Merophysiinae).
Familia LATHRIDIIDAE
Adultos de algunas especies se encuentran en
el follaje de diversas plantas, primariamente
asociados a flores; la gran mayoría vive en
materia orgánica vegetal.
Para Chile se han citado 13 géneros y 39
especies (Moroni, 1975b; Lathridiinae). Se-
gún aportes recientes, a esta cifra se deben
agregar 2 géneros y 11 especies (Rúcker,
1978, 1981, 1984a-b; Rúcker $ Otto, 1978);
además se debe incluir a Melanophthalma sem.-
nigra Belon, la cual fue mencionada para Chi-
le por Philippi (1887, página 677) y omitida en
catálogos posteriores (presente en Chile de
acuerdo a determinación de W. Rúcker, sobre
la base de material del Museo Nacional de
Historia Natural). En resumen, esta familia
está representada en nuestro territorio por 15
géneros y 51 especies.
Superfamilia TENEBRIONOIDEA
Este grupo corresponde a la sección Hetero-
mera de Cucujoidea (sensu lato); incluye varias
familias muy poco diversificadas, con distribu-
ción geográfica bastante restringida.
Familia COLYDIIDAE
Los escasos antecedentes de colecta indican
hallazgos de adultos en suelo y bajo corteza de
árboles. En Chile 8 géneros y 12 especies
(Blackwelder, 1945; Dajoz, 1969, 1980; Pope,
1955), Endophlaeus (sic) angustatus Solier
(1851, páginas 242 a 243) no es citada por
Blackwelder (1945); se encuentra en curso
una revisión que incluye descripciones de:
nuevos géneros y especies presentes en Chile
(Stanislaw A. Slipinski, comunicación per-
sonal).
Familia MYCETOPHAGIDAE
Primariamente asociados a hongos (cuerpos
frutosos de hongos superiores), se les suele
encontrar también en humus. A la única espe-
cie citada por Blackwelder (1945) para nues-
tro país, se debe agregar otra de amplia distri-
bución mundial y asociada a productos alma-
cenados, la cual ha sido reportada reciente-
mente (Arias 8 Dell'Orto, 1983); en territorio
chileno 2 géneros y 2 especies.
Familia CIIDAE
Se encuentran en el interior de hongos leño-
sos, en donde las larvas construyen galerías;
ocasionalmente adultos en suelo. En Chile un
género con 6 especies, de estas Cis chilensis
Germain (1855, página 405) no es citada por
Blackwelder (1945).
Familia MELANDRYIDAE
Los adultos se suelen encontrar sacudiendo el -
follaje de diversas plantas; también frecuen-
tan flores. En nuestro país se encuentran pre-
sentes (Blackwelder, 1945; Nikitskiy € Belov,
1982; Pic, 1953) los géneros Orchesia (11 espe-
cies), Lederia (2 especies), Xylita (1 especie),
Mallochira (1 especie), Serropalpus (1 especie) y
Amomphopalpus (2 especies).
Familia MORDELLIDAE
Adultos asociados a flores de diversas plantas,
siendo especialmente abundantes en umbelí-
feras. Pino (1985) entrega una lista de 5 géne-
ros y 32 especies para Chile.
Familia RHIPIPHORIDAE
No se dispone de antecedentes biológicos de
las especies dadas para Chile; estas son 3, ubi-
cadas en dos géneros (Blackwelder, 1945).
Familia OEDEMERIDAE
Las larvas de algunas especies se han encon-
trado en el interior de madera en proceso de
descomposición (Ananca en la zona basal de
Trichocereus, en la Región Metropolitana; Me-
copselaphus en tronco de Nothofagus pumilo,
XII Región - Parque Nacional Torres del Pal-
ne, conviviendo con larvas de Cycloderus: Py-
thidae).
Antiguamente se habían incluido en esta
familia los géneros Rhopalobrachium (véase
Phloeostichidae), Batobius (Mycterinae sensu
Spilman, 1954), Cycloderus (véase Pythidae) y
Loboglossa (véase Mycteridae).
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 95
Aparte de los géneros antes mencionados
existe otra cantidad similar que han sido omi-
tidos en el catálogo de Blackwelder (1945),
cuyas últimas menciones como Oedemeridae
se remontan a la segunda mitad del siglo pasa-
do (Gemminger € Harold, 1870; Philippi,
1887); estos géneros monoespecíficos, que se
deben considerar en Oedemeridae hasta un
posterior estudio, son:
— Promechetlus Solier, 1851 (= Promechochilus
Gemminger 8: Harold, 1870) y su especie P.
vaniegatus Solier (1851, páginas 251 a 252),
citada por Spilman (1954) en Salpingidae
incertae sedis. Un estudio detallado de esta
especie con toda seguridad obligará a su
traspaso a otra familia, ya que un análisis
preliminar permiten relacionarla con ele-
mentos neozelandeses de Chalcodryidae.
— Nephrosis Fairmaire 8 Germain (1863, pági-
nas 266 a 267) y la especie N. sulcicollis F. 8e
G.
— Oligorhina Fairmaire € Germain (1863, pá-
gina 276) y su especie O. ruficollis F. 8e G.
— Nimales Fairmaire € Germain (1861, pági-
na 6) y la especie N. longicornis F. £e G.
Basados en los antecedentes previos y en el
aporte de Arnett (1961 y comunicación perso-
nal), en nuestro país están presentes 11 géne-
ros y 17 especies.
Familia ANTHICIDAE
La mayoría de las especies, en su estado adul-
to, se encuentran asociadas a flores y en algu-
nos casos a suelo. A la revisión efectuada por
Werner (1975), se deben agregar los géneros
Muitraelabrus Solier (2 especies) y Copobaenus
Fairmaire 8 Germain (2 especies); para este
último género se ha propuesto (Abdullah,
1969b) la subfamilia Copobaeninae. Abdullah
(1967, como Pyrochroidae) incluye en el gé-
nero Pilipalpus Fairmaire (véase Pythidae) a
dos especies chilenas descritas por Pic (1942b)
bajo el género Copobaenus.
La familia es considerada aquí en el sentido
de Crowson (1955), excluyendo al género La-
griorda Fairmaire 8 Germain que se ubica en la
familia Cononotidae (véase Crowson, 1981);
este género es considerado por Abdullah e
Abdullah (1968) como Anthicidae-Euryge-
niinae, asignándolo posteriormente (Abdu-
llah, 1974) a otra subfamilia (Lagrioidinae).
En Chile esta familia se encuentra repre-
sentada por 7 géneros y 19 especies, a las que
se debe agregar dos especies de posición in-
cierta (Werner, 1975).
Familia ADERIDAE
Adultos asociados a flores, se colectan ocasio-
nalmente sacudiendo el follaje de diversas
plantas. El único género presente en Chile,
con una especie, es citado por Blackwelder
(1945).
Familia CONONOTIDAE
Los representantes del único género presente
en nuestro país (Lagrivcida, con dos especies),
se encuentran en forma más o menos abun-
dante en la zona costera entre Atacama y Re-
gión Metropolitana, en dunas bajo plantas. La
posición taxonómica de este género ha sido
considerada problemática excluyéndolo de
Lagriidae y ubicándolo relacionado con Oede-
meridae, Cononotidae y Anthicidae (Crow-
son, 1955); con posterioridad es reconocido
como perteneciente a Cononotidae (Crowson,
1981). Por su parte, Abdullah (1974) estima
que Cononotidae es un sinónimo de Anthici-
dae e incluye en esta última familia, como
Lagrioidinae-Lagrioidini, al género chileno.
Lagrioida había sido referido previamente
(Abdullah 8 Abdullah, 1968) a Anthicidae.
Familia MELOIDAE
Adultos fitófagos, alimentándose de diversas
partes de un variado número de plantas; en la
zona central se les ha encontrado hasta 2.500
metros de altitud. Antecedentes biológicos de
Lyttomeloe saulcy: (Guérin) son entregados por
Selander (1988) y de Epicauta pame (Molina)
por Durán (1986).
En Chile se encuentran presentes 11 géne-
ros con un total de 31 especies (Blackwelder,
1945; Germain, 1903; Selander, 1960, 1966,
1983). Anthicoxenus Fairmaire « Germain ha-
bía sido listado previamente en Anthicidae;
Pseudomeloe machado: Germain (1903, páginas
55 a 56), descrita para la Isla Mocha, ha sido
omitida en catálogos. Una lista de las especies
del género Tetraonyx que se encuentran en
Chile se puede encontrar en un aporte de
Selander (1983).
26 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Familia SCRAPTIIDAE
No hay antecedentes biológicos para las espe-
cies presentes en nuestro país; algunos ejem-
plares han sido colectados sacudiendo el fo-
llaje de varias plantas.
Tres géneros y 11 especies chilenas son lis-
tadas por Blackwelder (1945), éstos son:
Scraptia Latreille (9 especies), Nemacerus Solier
(l especie) y Tolmetes Champion (1 especie). La
especie Nemacerus incertus Solier, es citada tam-
bién por Blackwelder (1945, página 376) co-
mo Nematocerus incertus bajo Malachiidae (ac-
tualmente esta última categoría es considera-
da como una subfamilia de Melyridae). La
clasificación supraespecífica de esta familia es
tratada por Franciscolo (1972).
Familia PYTHIDAE
Los adultos se suelen encontrar en follaje.
Una especie de Cycloderus ha sido criada a par-
tir de larvas obtenidas en un tronco de lenga
(Nothofagus pumilio), en proceso de descompo-
sición. De acuerdo a los registros de colecta se
distribuyen en Chile desde Nuble a Maga-
llanes.
El género Pilipalpus Fairmaire (2 especies
en Chile) fue considerado como Anthicidae
(Abdullah, 1964) y con posterioridad ubicado
en Pyrochroidae (Abdullah, 1965, 1967). Vul-
cano e: Pereira (1972, como Pyrochroidae) en-
tregan una lista y sinonimia de las especies de
Pilipalpus presentes en Chile, agregando una
especie omitida por Blackwelder (1945).
Lawrence (1982) incluye en esta familia,
además de Pilipalpus, a Cycloderus Solier (5 es-
pecies en Chile); esta posición es compartida.
por Watt (1987). Cycloderus ha sido considera-
do previamente como Oedemeridae (Arnett,
1950; Spilman, 1954) o Salpingidae (Arnett,
1961).
Nikitskiy (1986) propone una nueva fami-
lia, Pilipalpidae, relacionándola con Pyro-
chroidae, Boridae, Mycteridae, Pythidae, Sal-
pingidae y, con reservas, Pedilidae. Watt
(1987) considera a Pythidae integrado por las
subfamilias Pilipalpinae y Pythinae, criterio
que se adopta en este aporte.
Esta familia está representada en Chile por
3 géneros y 8 especies. Se incluye en este total a
Pythoplestus Kolbe (con una especie), el cual su
descriptor lo ubica en Pythinae (Kolbe, 1907);
este género es listado por Blackwelder (1945)
como Pythidae de posición incierta.
Familia SALPINGIDAE
No se dispone de antecedentes biológicos para
las especies chilenas ubicadas en esta familia;
adultos han sido colectados asociados a suelo y
a follaje. Cuatro géneros y 8 especies presen-
tes en Chile; estos taxa han sido listados como -
Pythidae (Salpinginae) por Blackwelder
(1945), los géneros y su sinonimia es entrega-
da por Spilman (1954, Salpingidae-Salpingi-
nae).
Familia MYCTERIDAE
Representantes de esta familia se distribuyen -
en Chile desde Coquimbo a Magallanes.
Crowson (1955) incluye en esta familia a las
tribus Mycterini y Lacconotini, consideradas
por Blackwelder (1945) bajo Pythidae y con
nivel de subfamilia. Arnett (1961) estima que
los géneros Cycloderus Solier (véase Pythidae) y
Loboglossa Solier, citado por Blackwelder
(1945) en Oedemeridae, se deben ubicar en
Lacconotini. Spilman (1954) crea el nombre
genérico Suggibus en reemplazo de Aybogaster
Seidlitz (nec Szépligeti), propuesto este último
en reemplazo de Loboglossa Champion (nec So-
lier); Briton (1979) menciona la presencia de
dos especies de Hybogaster en Chile, al parecer
desconociendo el nombre de reemplazo Sug-
gibus Spilman. La familia ha sido redefinida
por Crowson € Viedma (1964).
En Chile se encuentran 4 géneros y 9 espe-
cies.
Familia ZOPHERIDAE
En Chile se distribuyen desde Aisén a Maga-
llanes; los adultos se encuentran bajo troncos
al interior de bosques (Peña, 1966a). El único
género representante de esta familia en nues-
tro país (con 4 especies), había sido considera-
do previamente dentro de Tenebrionidae;
Watt (1967b) lo incluye en Zopheridae y lo
confirma con posterioridad (Watt, 1974b).
Existe una clave para el reconocimiento de las
especies (Kulzer, 1963).
Familia LAGRIIDAE
El grupo es considerado por algunos autores
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 17)
como una subfamilia de Tenebrionidae
(Doyen, 1972; Watt, 1974b); Crowson (1955,
1981) mantiene su nivel de familia, opinión
que es seguida en este aporte.
Se consideran en esta familia, mientras no
se efectúe un detallado estudio de ellos a fin de
clarificar su correcta posición taxonómica, a
los géneros Adelium (sensu Kaszab, 1970),
Gondvanadelium Kaszab (1981b) y Chilenolagria
Pic.
Watt (1974b) indica que las especies descri-
tas por Fairmaire € Germain como Adelium(A.
sulcatulum y A aeneum) no pueden ser incluidas
en dicho género, no pronunciándose acerca
de otras 4 especies chilenas descritas por Kas-
zab (1970) bajo ese mismo género.
Los representantes de esta familia en nues-
tro territorio corresponden a 9 especies, ubi-
cadas en 3 géneros; una clave para las especies
de “Adeluum” es entregada por Kaszab (1970).
Familia TRACHELOSTENIDAE
Elevada recientemente al rango de familia
(Watt, 1987), incluye al género chileno Trache-
lostenus Solier; este género cuenta con dos es-
peciés en nuestro territorio, las cuales se distri-
buyen desde Bío-Bío a Aisén.
Trachelostenus ha sido relacionado con Rho-
palobrachium (véase Phloeostichidae) y asigna-
do a Lagriidae (Lacordaire, 1859: “Traché-
lostenides”) y referido con reservas a Oede-
meridae (Arnett, 1951). Borchmann (1910) lo
cita dentro de Lagriidae (Trachelosteninae),
Crowson (1955) lo incluye con reservas en La-
griidae y Watt (1974b) sugiere que deba in-
cluirse en Pythidae (Trachelosteninae).
Familia TENEBRIONIDAE
Esta familia, la más numerosa en nuestro te-
rritorio, se encuentra presente en todo tipo de
ambientes; antecedentes de hábitat de las es-
pecies chilenas se pueden encontrar en tra-
bajos previos (Peña, 1966a-b, 1987). Resulta
interesante destacar el hecho de que más del
50% de las especies pertenecen a géneros de
distribución mayoritariamente restringidas a
zonas áridas y/o semiáridas (incluyendo am-
bientes esteparios), zonas más afectas a la ac-
ción de cambios climáticos. Peña (1967a) men-
-ciona la presencia de 367 especies en Chile,
incluyendo un conjunto de especies ubicadas
en la actualidad en otras familias (Archeo-
crypticidae, Chalcodryidae, Lagriidae, Zophe-
ridae, Perymilopidae y Chrysomelidae) y no
incluye las especies agrupadas bajo Allecu-
linae.
En nuestro país se encuentran representa-
dos 85 géneros y 465 especies; para este regis-
tro véase Arias € DellOrto (1983) y todas
aquellas referencias relativas a Tenebrionidae
citadas por Elgueta (1988).
Se incluyen en las cifras antes mencionadas
a: Cardiogenius cicatricosus Solier (Gebien,
1910; Lacordaire, 1859), especie omitida por
Peña (1966a); Afrasidia propensa (¿autor?) de
acuerdo a material de la colección del Museo
Nacional de Historia Natural, identificado
por Luis E. Peña; las especies tratadas previa-
mente bajo el nombre Alleculidae (Campbell,
1976), siguiendo lo propuesto por Doyen
(1972) y Watt (1974b) en el sentido de conside-
rarla una subfamilia de Tenebrionidae. Tam-
bién se incluye Arthroplatus pallipes Solier
(1851), omitida por Peña (1966a) y menciona-
da posteriormente (Peña, 1975) como “Acrop-
teron pallipes (Sol.)?”, siguiendo a Blackwelder
(1945); un estudio detallado de esta especie
posiblemente obligará a su traspaso a otra fa-
milia.
Brachyhelops hahni Fairmaire, listada previa-
mente en esta familia, debe ser incluida en
Chrysomelidae según un trabajo en curso
(Mauro Daccordi, comunicación personal); ya
Watt (1967b) expresaba sus dudas de que esta
especie fuera un Tenebrionidae. Quizás éste
sea también el caso de Dolphus globipennis Blan-
chard, única especie chilena de los considera-
dos previamente como Helopini, que aún se
mantiene en Tenebrionidae.
Cabe señalar que el grueso de la literatura
referente a taxa presentes en Chile se encuen-
tra publicado en idioma alemán, existiendo
claves disponibles para diversos grupos; una
clave para la identificación de las especies de
Alleculinae ha sido entregada por Campbell
(1976).
Familia ARCHEOCRYPTICIDAE
Los adultos se encuentran en una diversidad
de ambientes. El rango de familia es propues-
to por Watt (1974b) y su nivel taxonómico
aceptado por otros autores (Lawrence, 1982;
28 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Lawrence € Newton, 1982). Bajo esta familia
se ubican los géneros tratados bajo Archeo-
crypticini (Tenebrionidae) por Kaszab
(1981a), quien no fundamenta su plantea-
miento. Considerando los argumentos entre-
gados por Watt (1974b), en este aporte se si-
gue su proposición.
Una clave para el reconocimiento de los
géneros y especies que se encuentran dadas
para nuestro país ha sido publicada por Kas-
zab (1981a), dentro de las especies asignadas
al género Enneboeus omite a la especie E. baeck-
stroemi Pic, citada por Peña (1966a) en Tene-
brionidae, de la cual es sinónimo Archeocrypti-
cus chilensis Kaszab. Esta sinonimia fue sugerl-
da en 1985 por el primero de los autores al Dr.
Zoltan Kaszab, quien la aceptó; no tenemos
antecedentes de que haya publicado esta sino-
nimia, hasta el momento de su deceso.
En la colección del Museo Nacional de
Historia Natural (Santiago-Chile), existe una
serie de ejemplares identificados por Hans
Kulzer como Enneboeus ruficolor Pic, especie
actualmente ubicada en el género Pseudenne-
boeus Kaszab (1981a); la presencia de esta es-
pecie en nuestro país necesita ser confirmada
y posiblemente corresponda a una identifica-
ción errónea. La familia se encuentra repre-
sentada en Chile por 2 géneros y 3 especies.
Familia CHALCODRYIDAE
Los adultos se encuentran en ramas secas, en
bosque húmedo, de Valdivia a Aisén (Peña,
1966a).
La familia fue propuesta por Watt (1974a)
para incluir un conjunto de especies distribui-
das en Tasmania y Nueva Zelanda, no ex-
cluyendo la presencia de esta familia en Amé-
rica del Sur; con posterioridad Watt (1982)
transfiere a su nueva entidad a Cyphaleus valda-
vianus Philippi €e Philippi, previamente inclui-
da en Tenebrionidae (Peña, 1966a). Es nece-
sario estudiar esta especie para determinar su
exacta posición genérica, considerando que la
tribu Cyphaleini se encuentra ubicada en la
actualidad dentro de Tenebrionidae (Watt,
1974b).
Familia PERIMYLOPIDAE
Los adultos de las especies presentes en Chile,
exclusivas de la región magallánica, se en-
cuentran bajo piedras; la familia tiene una
distribución geográfica restringida al hemisfe-
rio Sur.
Los representantes chilenos de este grupo
han sido referidos tentativamente a Pythidae
(Crowson, 1955; género Chanopterus), listados
bajo Perymylopidae (Crowson, 1955; página
172) o tratados como Tenebrionidae-Helo-
piini (Kulzer, 1963; Peña, 1966a). Un detalla-
do análisis es efectuado por Watt (1967b),
quien incluye en esta familia a los géneros
Hydromedion y Chanopterus, entregando ade-
más una clave para su reconocimiento; con
posterioridad agrega otros antecedentes
(Watt, 1970).
En nuestro país esta familia se encuentra
representada por 6 especies pertenecientes a
dos géneros; una clave para el reconocimiento
de ellas se encuentra en un aporte de Kulzer
(1963).
Superfamilia CHRYSOMELOIDEA
Incluye coleópteros fitófagos, adultos y/o lar-
vas se alimentan de diversas partes vivas O
muertas de vegetales (semillas, hojas, etc.); al-
gunas especies se encuentran asociadas a pro-
ductos vegetales almacenados (Bruchidae). En
Chile se encuentran representadas 3 de las 4
familias reconocidas en la actualidad.
Familia CERAMBYCIDAE
Las diversas especies se desarrollan en tejido
vegetal vivo o muerto, en plantas nativas O
cultivadas. Para la especie Acalodegma servillel
Blanchard, se ha señalado un desarrollo larval
semilibre (Peña €: Vidal, 1976); esta especie,
debido al tamaño que alcanza en su estado
larval, completaría su desarrollo entre las
hojas secas, prensadas, que se acumulan bajo
su planta huésped.
En esta familia se incluyen las especies
agrupadas en la subfamilia Oxypeltinae, cita-
das como Disteniidae (Crowson, 19831; La-
wrence e Newton, 1982; Mann 8 Crowson,
1983), las cuales se desarrollan en interior de
madera viva de diversas especies de Nothofa-
gus. La larva de Cheloderus childreni Gray ha
sido descrita por Duffy (1960) y figura tam-
bién en un aporte posterior (Cameron és Real,
1975), en el cual se entregan valiosos antece-
dentes biológicos; datos de período de emer-.
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 99
gencia, conducta de vuelo y apareamiento son
entregados por Gara et al. (1978). Anteceden-
tes de plantas huéspedes para las especies de
Cheloderus se pueden encontrar en un aporte
de Peña (1974).
A la lista de especies presentes en Chile
(Cerda, 1986) se debe agregar al género Pa-
raholopterus Cerda € Cekalovié con su especie
P. nahuelbutensis Cerda 8e Cekalovié (1987),
Maicroplophorus pena: Galileo (1987), Holopterus
(Holopteridius) herrerai Cerda (1987), Callideri-
phus maculatus Cerda (1988a) y a Hylotrupes
bajulus (Linnaeus) detectada recientemente en
nuestro país (Cerda, 1988b).
Macroplophorus castaneus Blanchard se debe
ubicar en la sinonimia de M. magellanicus Blan-
chard, de acuerdo a Galileo (1987). Breuning
(1942) describe Emphytoecides y E. lineolata, ta-
xa que Cerda (1988b) considera sinónimos de
Emphytoecia Fairmaire € Germain y E. lineolata
(Blanchard), respectivamente; más tarde el
mismo autor (Breuning, 1980) crea Parischno-
lea chiliensis, la cual se reconoce (Cerda, 1988b)
como sinónimo de Neohebestola petrosa (Blan-
chard). Neohebestola luchopegnai es descrita pa-
ra Chile por Martins 8 Galileo (1989).
De acuerdo a la información disponible en
nuestro país se encuentran 72 géneros y 176
especies, además de 18 especies en nomina du-
ba (Cerda, 1986, 1988a-b).
Familia BRUCHIDAE
Asociados a semillas de distintas plantas, con
frecuencia en forma específica; algunas espe-
cies son nocivas a granos almacenados, varias
han sido introducidas a Chile. Se han dado
antecedentes biológicos para Megacerus eulo-
phus (Erichson) (Pfaffenberger et al., 1984),
Scutobruchus gastos Kingsolver (Klein € Cam-
pos, 1978; Reyes € Hermosilla, 1974), La-
thraeus elegans (Blanchard) (Bridwell, 1952) y
Pseudopachymerina spimipes (Erichson) (Aven-
daño 8 Sáiz, 1978; Sáiz et al., 1980). Se ha
comprobado el desarrollo de Rhipibruchus prc-
turatus (Farhaeus) a partir de semillas de Proso-
pis chilensis y de Acanthoscelades leguminarius Gy-
llenhal en semillas de Senna coquimbensis.
Para Chile se han descrito o citado 9 géne-
ros con un total de 30 especies, incluyéndose
en este número algunos taxa cuya presencia
en Chile necesita ser confirmada (Blackwel-
der, 1946; Bottimer, 1968; Bridwell, 1952;
Decelle, 1966; Kingsolver, 1968, 1975, 1983;
Kingsolver 8 Borowiec, 1988; Olalquiaga,
1942, 1944, 1949a; Rivera, 1904a-b; Schnei-
der, 1904; Terán 8: Kingsolver, 1977).
Se ha mencionado la presencia en nuestro
país de otros géneros (véase Olalquiaga,
1949a), basándose en identificaciones efectua-
das en Estados Unidos de América, sin que
hayan sido publicados los respectivos cambios
nomenclaturales; esto es, proposición de gé-
neros y lista de especies incluidas. Se encuen-
tra en curso la confección de una lista de las
especies presentes en nuestro país, siendo ne-
cesario el estudio de muchas de ellas para de-
terminar correctamente el género al cual per-
tenecen, especialmente aquellas incluidas en
la actualidad bajo Acanthoscelides (John M.
Kingsolver, comunicación personal).
Familia CHRYSOMELIDAE
Larvas y adultos fitófagos; los adultos se en-
cuentran usualmente sobre el follaje de diver-
sas plantas, ocasionalmente refugiados bajo
plantas (por ejemplo: Chelymorpha vartans). Al-
gunas especies son nocivas a cultivos.
Según los antecedentes de que se dispone
(Bechyné, 1946, 1950a-b, 1951, 1952a-b,
1953, 1955; Bechyné € Springlová de Bechy-
né, 1973; Blackwelder, 1946, 1957; Brown,
1962; Durán, 1963; Fairmaire, 1884; Monrós,
1949a-b, 1951, 1952, 1953a-b; Philippi, 1887;
White, 1972), en Chile se encuentran 59 géne-
ros y 124 especies; se incluye en estas cantida-
des a Brachyhelops hahni Fairmaire, considera-
da previamente como Tenebrionidae (Mauro
Daccordi, comunicación personal).
Los géneros más numerosos son: Pachybra-
chis Chevrolat (8 especies); Mylassa Stal (7 es-
pecies), Dictyneis Baly (7 especies) y Protopsilap-
ha Bechyné € Springlová de Bechyné (13 es-
pecies); en relación a Dictyneis, Jerez € Berti
(1987) transfiere a Myochrous pulvinosus Blan-
chard al género Glyptoscelis LeConte lo cual
crea un problema nomenclatural ya que dicha
especie había sido designada especie tipo de
Dictyneiss. Un género interesante es Procalus
Clark (4 especies), cuyos representantes se en-
cuentran asociados a especies de Anacardia-
ceae; se ha señalado (Jerez, 1986) la relación
existente entre P. viridas (Philippi € Philippi) y
Schinus latifolius.
30 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Superfamilia CURCULIONOIDEA
Larvas y adultos fitófagos, alimentándose de
partes constitutivas de diversos vegetales. Las
larvas pueden ser de vida libre, subterránea o
bien encontrarse en el interior de madera;
algunas especies nocivas a cultivos y productos
almacenados.
En Chile representadas 7 de las 11 familias
reconocidas en la actualidad por diversos au-
tores (Crowson, 1981, 1984; Lawrence é
Newton, 1982).
Familia NEMONYCHIDAE
Algunas especies se desarrollan en conos
masculinos o femeninos de Araucaria arauca-
na; los adultos de otras especies se encuentran
sacudiendo el follaje de Nothofagus y coníferas.
Los representantes han sido listados por Wib-
mer £ O'Brien (1986).
En nuestro país se encuentran los géneros
Rhynchitomacerinus Kuschel (1 especie), Meco-
macer Kuschel (4 especies), Nannomacer Kus-
chel (2 especies) y Rhynchitomacer Voss (8 espe-
cies), existiendo claves disponibles para el re-
conocimiento de géneros y especies (Kuschel,
1954, 1959b). Kuschel (1983) efectúa un aná-
lisis de la familia, a nivel mundial.
Familia ANTHRIBIDAE
No existen antecedentes biológicos para las
especies presentes en Chile; los adultos son
generalmente colectados sacudiendo el follaje
de diversas plantas. No se dispone de la infor-
mación actual acerca de los géneros y especies
y es posible que en los últimos años se hayan
efectuado cambios nomenclaturales, si se con-
sideran las citas recientes (Ashworth 8 Ho-
ganson, 1984, 1987; Hoganson 8 Ashworth,
1982) de la especie Ormiscus parvulus (Blan-
chard), conocida por nosotros como Tropr-
deres.
De acuerdo a la información disponible
(Aurivillius, 1931; Blackwelder, 1947; Cam-
pos € Peña, 1973; Jordan, 1931), en nuestro
país se encuentran: Dinocentrus Lacordaire (8
especies), Sistellorhynchus Blanchard (2 espe-
cies), Tropideres Schónherr (2 especies), Co-
rrhecerus Schónherr (1 especie), Araecerus
Schónherr (1 especie), Opisolia Jordan (1 espe-
cie) y Proscopus Jordan” (1 especie); en resu-
men 7 géneros con 16 especies.
Familia BELIDAE
Adultos se encuentran en follaje de Blechnum,
Austrocedrus chilensis, Podocarpus, Saxegothaea y
Fitzroya cupressoides;, en esta última conífera se
han colectado larvas (Kuschel, 1959b). Las es-
pecies presentes en: nuestro país, distribuidas
entre la Región Metropolitana y Aisén, han
sido tratadas previamente y se han entregado
claves para su reconocimiento (Kuschel,
1959b; Vanin, 1976); todas presentan dimor-
fismo sexual, con la excepción (Elgueta,
1986a) de Callirhynchinus exquisitus (Fairmaire
$ Germain).
Los géneros presentes en Chile son Tri-
chophthalmus Kuschel (1 especie), Callirynchi-
nus Kuschel (1 especie) y Dicordylus Lacordaire
(3 especies); Vanin (1976) propone el nuevo
género Atractuchus, considerado posterior-
mente como un sinónimo de Dicordylus por
Kuschel (1n Wibmer £ O'Brien, 1986). La fa-
milia es de distribución austral, encontrándo-
se presente en Brasil, Argentina, Chile, Aus-
tralia, Tasmania, Nueva Guinea y Nueva Ze-
landa.
Familia OXYCORYNIDAE
Larvas y adultos de las especies chilenas se
encuentran en los conos femeninos de Arauca-
ria araucana y están, por lo tanto, restringidos
al área de distribución de esta planta en nues-
tro territorio; en Chile, sólo se presenta el
género Oxycraspedus Kuschel, con tres espe-
cies, las cuales han sido tratadas por Kuschel
(1959b) y listadas por Wibmer 8€ O'Brien
(1986).
Familia ATTELABIDAE
Los adultos se colectan en follaje de varias
plantas, incluyendo Nothofagus; no se dispone
de antecedentes biológicos.
“El Dr. Guillermo J. Wibmer (USA) ha llamado la
atención del primer autor en relación a que Proscopus
Jordan, 1924 (Anthribidae) es un homónimo posterior de
Proscopus Marshall, 1919 (Curculionidae); el respectivo
nombre de reemplazo para Proscopus Jordan, se propon-
drá a la brevedad.
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 31
En Chile se distribuyen desde Coquimbo a
Aisén. Las especies presentes en nuestro terri-
torio son listadas por Wibmer £€ O'Brien
(1986), quienes citan el género Minurus Wa-
terhouse (= Eugnamptoplesius Voss) con 4 es-
pecies.
Familia APIONIDAE
Los adultos frecuentan flores y también se
encuentran asociados al follaje de diversos ve-
getales; adultos de una especie de Apion se
suelen encontrar en el interior de agallas va-
cías de Nothofagus dombey:. Se ha introducido a
nuestro país Apion ulicis Forster para el control
de Ulex europaeus, especie que no es menciona-
da por Wibmer 8 O'Brien (1986); según este
último aporte, en Chile están presentes los
géneros Circapion Kissinger (1 especie), Chila-
pion Kissinger (1 especie) y Apion Herbst (6
especies, incluyendo A. ulicis). Kuschel (1983)
menciona la presencia en nuestro país del gé-
nero Caenominurus Voss, sin identificación a
nivel específico.
Familia CURCULIONIDAE
Las diversas especies presentan variada con-
ducta y desarrollo. Los adultos se pueden en-
contrar alimentándose de hojas (Apocnemido-
phorus en Anacardiaceae), tallos (Rhyephenes en
Anarthrophyllum), botones de flores (Malaiser-
hinus kageneckiae Kuschel, en Kageneckia oblon-
ga), hojas y pétalos caídos (especies de hábitos
nocturnos como Strangaliodes sticticus Blan-
chard, en dunas litorales). Por su parte las
larvas se alimentan de raíces de diversas plan-
tas (VNaupactus xanthographus (Germar)), hojas
(Platyaspistes glaucus Farhaeus véase Jackson,
1987), granos y alimentos almacenados (Sito-
philus), maderas elaboradas (Achopera lachry-
mosa Pascoe, en interior de parquet de eucalip-
tos), ramas muertas (Pentatemnus), tronco y
ramas de plantas vivas (Rhyephenes, Aegorha-
nus), helechos (Germaimius chilensis (Reed)), en
Blechnum chilense y B. magellanicum; Kuschel,
1987). Algunas especies tienen incidencia ne-
gativa en cultivos, siendo varias de ellas intro-
ducidas, y en plantaciones forestales (Genio-
cremnus chiliensis (Boheman) y Cyphometopus
marmoratus Blanchard, afectando plantaciones
de pino, véase Sáiz € Gomá, 1985; Sáiz el al.,
1984).
Se incluye en esta familia a Scolytinae, si-
guiendo la opinión de diversos autores (Crow-
son, 1955, 1981; Kuschel, 1966; Lawrence,
1982; Lawrence 8 Newton, 1982; May, 1967),
subfamilia que Wood (1973) considera de ni-
vel familia.
De acuerdo a catálogo recientemente publi-
cado (Wibmer 8: O'Brien, 1986), incluyendo a
Scolytinae (Ojeda, 1985; Schedl, 1966, 1972,
1980), la información relativa a registros re-
cientes (Elgueta, 1986b; Olalquiaga, 1980) y
aportes taxonómicos (Clark € Burke, 1988;
Kuschel, 1987), en nuestro territorio se en-
cuentran presentes 135 géneros y 431 espe-
cies. A esta cantidad se debe agregar, basado
en material presente en la colección del Museo
Nacional de Historia Natural (Santiago-Chi-
le), a Naupactus verecundus Hustache (Antofa-
gasta: San Pedro de Atacama) y Neopachyty-
chius squamosus Hustache (Antofagasta: Cala-
ma; Santiago: Quilicura, Pudahuel, Barran-
cas, Maipú y El Monte), se debe incluir además
a Apocnemidophorus migrotuberosus Fairmaire,
descrito originalmente para Chile (Fairmaire,
1884; página 504: “Punta-Arena”), y se debe
excluir a Ottorhynchus juvencus Gyllenhal y O.
meridionalis Gyllenhal, especies las cuales no se
encuentran en Chile (véase también Kuschel,
1955; páginas 269 y 308). En resumen, en
Chile se encuentran 136 géneros y 432 espe-
cies.
Considerando los antecedentes previos, las
subfamilias representadas en nuestro país, en
orden sistemático e incluyendo entre parénte-
sis el número de géneros y especies para cada
una, son: Polydrosinae (16 géneros, 31 espe-
cies), Entiminae (14 géneros, 97 especies),
Aterpinae (3 géneros, 22 especies), Eugnomi-
nae (2 géneros, 5 especies), Rhytirrhininae (9
géneros, 75 especies), Petalochilinae (1 géne-
ro, 1 especie), Juanorhininae (3 géneros, 10
especies), Molytinae (9 géneros, 17 especies),
Magdalidinae (6 géneros, 13 especies), Erirhi-
ninae (7 géneros, 14 especies), Curculioninae
(8 géneros, 8 especies), Anthonominae (1 gé-
nero, 7 especies), Tychiinae (1 género, 1 espe-
cie), Cryptorhinchinae (10 géneros, 40 espe-
cies), Ceutorhynchinae (1 género con una es-
pecie), Baridinae (5 géneros, 11 especies),
Cossoninae (11 géneros, 17 especies),
Dryophthorinae (1 género, 1 especie), Rhyn-
32 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
chophorinae (3 géneros, 8 especies) y Scolyti-
nae (25 géneros, 53 especies).
Los géneros con mayor cantidad de espe-
cies son: Cylydrorhinus (53 especies, Entimi-
nae), Aegorhinus (20 especies, Aterpinae), Las-
troderes (48 especies, Rhytirrhininae), Macros-
typhlus (12 especies, Rhytirrhininae) y Acalles
(16 especies, Cryptorhynchinae).
STREPSIPTERA
No existe un acuerdo general acerca de la
ubicación de este grupo dentro de un esque-
ma de clasificación; así, ha sido considerado
como una superfamilia de Coleoptera (Stylo-
poidea; Crowson, 1955), como familia dentro
de Lymexyloidea (Stylopidae; Crowson,
1981), o bien como un orden separado de
Coleoptera aunque muy relacionado con él
(Riek, 1974, 1979). Lawrence 8 Newton
(1982) estiman que su exacta posición no es
del todo clara, sugiriendo que aquellos carac-
teres utilizados para ubicarlos como una fami-
lia de Coleoptera, pueden haberse originado
independientemente en grupos no necesaria-
mente relacionados.
El primer registro de adultos en Chile co-
rresponde a Pérez D'Angello (1964); dicho
autor menciona la presencia de ejemplares
hembras, sin identificarlas, en varias especies
de Hymenoptera (Eumenidae: AHypodynerus
vespiformis, H. coarctatus y Stenodynerus sca-
briusculus; Sphecidae: Prionyx neoxenum). Pre-
viamente se habían publicado antecedentes de
la presencia de estrepsípteros en nuestro país,
basados en exhuvias (véase Hofmann, 1965).
Hofmann (1965) describe dos especies nue-
LISTAS SISTEMATICAS DE ESPECIES
vas para Chile, las cuales se encontraron para-
sitando Vespidae y Cicadellidae. Posterior-
mente se publican datos de la ubicación de los
estrepsípteros en sus mesoneros, que corres-
ponde principalmente al tercer tergo metasó-
mico, pudiéndose encontrar entre el segundo
y quinto tergo (Pérez D'Angello, 1968, 1969,
1971); en estos aportes se menciona además
otras especies mesoneras (Eumenidae: Hypo-
dynerus porteri y Pachodynerus peruensis; Spheci-
dae: Ammophila laeviceps). Ultimamente se ha
descrito una tercera especie para Chile (Tesón
£c de Remes Lenicov, 1979), posiblemente ba-
sada en parte del material mencionado previa-
mente por Pérez D'Angello (op. cat.). En Chile
3 géneros, con una especie cada uno.
COLEOPTERA FOSIL
Para nuestro país sólo existen dos referencias
sobre Coleoptera fósil, una de éstas basada en
la actividad presunta de una larva.
Familia CERAMBYCIDAE
Peña (1971) describe Australocerambyx chilensis,
nuevo género y especie, basado en galerías
encontradas en interior de madera petrificada
en la región de Magallanes, sin datación.
Familia CURCULIONIDAE
Kuschel (1959a) describe a Dorotheus guidensis,
nuevo género y especie, basado en un élitro
fósil, con datación para el Cretáceo superior,
que es incluida en Curculionidae (sensu stracto);
este registro corresponde a la región de Maga-
llanes.
El punto (.) después del número de página indica que la descripción original ha sido revisada y que
efectivamente la(s) página(s) mencionada(s) incluye(n) la descripción.
CUPEDIDAE
Prolixocupes Neboiss, 1960: 16-17.
— latreilles (Solier, 1849): 466-467. (Cupes);
Neboiss, 1960: 17. (Prolixocupes)
PAUSSIDAE
Ozaeninae
Tropopsis Solier, 1849: 179-180.
— biguttatus Solier, 1849: 182.
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 33
= Tropopsis biguttatus ab. inmaculata Bánnin-
OZ 207
— margmicollis Solier, 1849: 181.
Pachyteles Perty, 1830: 3
— gracilis Chaudoir, 1868: 69
TRACHYPACHIDAE
Trachypachini
Systolosoma Solier, 1849: 241-242.
— brevis Solier, 1849: 242-243.
— lateritium Négre, 1973: 291-292. (Systeloso-
ma: error); Ashworth € Hoganson, 1987:
872. (Chile).
PTILIIDAE
Throscidvuum Matthews, 1872: 64-66.
— fairmarre: Matthews, 1872: 67.
— german: Matthews, 1872: 67.
Ptinella Motschulsky, 1845: 505
—flavidula (Fairmaire € Germain, 1859):
355-356. (Ptilium)
Acrotripteryx Bréthes, 1914: 278.
— porteri Bréthes, 1914: 278-279.
Acrotrichis Motschulsky, 1848: 569
— auber Matthews, 1872: 117. (Trichopteryx)
— chilensis (Fairmaire € Germain, 1859): 355.
(Trichopteryx)
— motschulskyi Matthews, 1872: 117. (Trichop-
teryx)
DASCILLIDAE
Dascillinae
Dascillini
Dascillus Latreille, 1796: 43
— lividus (Fabricius, 1775): 116
KARUMIIDAE
Genecerini
Pleolobus Philippi 8: Philippi, 1864: 278-279.
— fuscescens Philippi 8: Philippi, 1864: 279.
— mgrinus Philippi € Philippi, 1864: 279-280.
RHIPICERIDAE
Polymertus Philippi, 1871: 293-295.
— chilensis (Laporte, 1834): 257 (Callirhipas)
= Polymertus marmoratus Philippi, 1871:
295.
CERATOCANTHIDAE
Germarostes Paulian, 1982: 13-14.
— posticus (Germar, 1843): 144 (Acanthocerus);
Paulian, 1982: 31. (Germarostes)
= Acanthocerus muricatus var. mochae Gutié-
rrez, 1949: 14.
Martinezostes Paulian, 1982: 63-64.
— asper (Philippi, 1859): 660-661. (Acanthoce-
rus); Harold, 1874: 44 (Cloeotus); Paulian,
1982: 64-65. (Martinezostes)
— fortecostatus (Gutiérrez, 1949): 9-10. (Cloeo-
tus); Paulian, 1982: 65. (Martinezostes)
— ruizi (Gutiérrez, 1946): 13. (Cloeotus); Pau-
lian, 1982: 65. (Martinezostes).
HYBOSORIDAE
Cotlodes Westwood, 1846: 163
— chilensis Westwood, 1846: 164
GLAPHYRIDAE
Lichnini
Lichnita Erichson, 1835: 269
subgénero Lichma sensu stricto
— limbata Erichson, 1835: 270
subgénero Neolichnia Gutiérrez, 1943: 151.
— gallardo Gutiérrez, 1943: 151-152.
— porteri Gutiérrez, 1943: 152-153.
Glaphyrini
Cratosceliss Erichson, 1835: 267
— aterrima Blanchard, 1851: 122.
— camcapilla Philippi € Philippi, 1864: 326.
— discolor Erichson, 1835: 296
— gayana Blanchard, 1851: 121-122.
— plana Blanchard, 1851: 120.
— striolata Redtenbacher, 1868: 61.
— uillosa Blanchard, 1851: 121.
—uulpina Erichson, 1835: 270
BYRRHIDAE
Byrrhinae
Pachymys Fairmaire, 1888: 29-30.
= Brachymys Fairmaire, 1885: 44-45. (nec
Meyer, 1847)
— puberulus (Fairmaire, 1885): 45. (Brachy-
mys); Fairmaire, 1888: 30-31. (Pachymys)
Morychastes Fairmaire, 1885: 43.
— australis (Blanchard, 1853): 52 (Byrrhus);
Fairmaire, 1885: 43-44. (Morychastes)
PSEPHENIDAE
Eubrianacinae
Eubrianax Kiesenwetter, 1874: 246
— luteosignatus Pic, 1947: 4.
34 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Eubriimnae
Tychepsephus Waterhouse, 1876: 15-16.
= Tychepsephenus Zaitzev, 1910: 4.
— felix Waterhouse, 1876: 16.
Ectopria LeConte, 1853: 351
— grandis Pic, 1947: 4.
HETEROCERIDAE
Gradus Pacheco, 1964: 72-73.
— rivularis (Germain, 1854): 327-328. (Hetero-
cerus)
= Heterocerus germaim: Grouvelle, 1896: 13;
Pacheco, 1964: 73 (sinonimia)
Efflagitatus Pacheco, 1964: 74-75.
— similis (Grouvelle, 1896): 12. (Heterocerus)
PHENGODIDAE
Mastinocerini
Mastinocerus Solier, 1849: 440-441.
— araucanus Wittmer, 1963: 91.
— breuipennis Solier, 1849: 441.
— chilensis Wittmer, 1976: 481.
— germam Pic, 1930: 320.
— kuscheli Wittmer, 1956: 225-226.
— mgnriceps Wittmer, 1963: 88.
= Mastinocerus atriceps Pic, 1926: 153 (nec
Pic, 1915)
— punctatus Wittmer, 1963: 90-91.
— ruficollas Wittmer, 1976: 479.
Mastinomorphus Wittmer, 1976: 484, 486.
— atacamaensis (Wittmer, 1963): 91-92. (Masti-
nocerus); Wittmer, 1976: 488, 489. (Mastino-
morphus)
— metropolitanus Wittmer, 1986: 164.
— obscurior Wittmer, 1986: 163-164.
— vicunaensis Wittmer, 1976: 489-490.
Oxymastimocerus Wittmer, 1963: 96.
— fulvus (Philippi 8c Philippi, 1864): 277-278.
(Mastigocerus); Wittmer, 1976: 504. (Oxy-
mastinocerus)
Neophengus Wittmer, 1976: 519-520.
— chilensis Wittmer, 1976: 520-521.
— huantaensis Wittmer, 1976: 521.
— pena: (Wittmer, 1963): 98. (Cenophengus);
Wittmer, 1976: 519, 520. (Neophengus)
DERODONTIDAE
Derodontinae
Nothoderodontus Crowson, 1959: 82-83.
— chilensis Lawrence. In: Lawrence 8: Hlavac,
1979: 410-411.
— dentatus Lawrence. In: Lawrence €: Hlavac,
1979: 411.
— newtonorum Lawrence, 1985: 80-81.
PELTIDAE
Decamerinae
Diontolobus Solier, 1849; 367-368.
= Diodontolobus Lacordaire, 1857: 460
= Micropeltis Redtenbacher, 1868: 38.
— costulatus Reitter, 1876: 80
— flavolimbatus (Reitter, 1877): 22-23. (Macro-
peltis)
|
— inaequalis (Reitter, 1877): 175. (Macropeltis)
— incostatus Reitter, 1876: 59
— lanuginosus (Léveillé, 1895): 80. (Micropeltis)
— punctipennas Solier, 1849: 368-369.
= Maicropeltis serraticollas Redtenbacher,
1867: 39.
= Diontolobus lateritius Fairmaire, 1884: |
488-4809.
Decamerus Solier, 1849: 369-371.
= Peltostoma Reitter, 1877: 173.
— haemorrhoidalis Solier, 1849: 371.
= Peltostoma unguicularis Reitter, 1877: 174.
Antixoon Gorham, 1886: 332
— maculatum Pic, 1944: 6.
—sermirufum Pic, 1944: 6.
Rentonimnae
Rentoniini
Rentontum Crowson, 1966: 120, 121.
— chilense Crowson, 1970: 6-7.
LYMEXYLIDAE
Atractocerus Palisot, 1801: 6
= Macrogaster Thunberg, 1885: 281
= Fusicorms Philippi, 1866: 115.
—uvaldivianus Philippi, 1866: 113-114.
RHIZOPHAGIDAE
Monotominae
Monotoma Herbst, 1793: 22
— quadrifoveolata Aubé, 1837: 468
= Monotoma subquadrifoveolata Fowler,
1889: 271
Europs Wollaston, 1854: 149
— chilensis Grouvelle, 1896: 213-214.
— corticinus Grouvelle, 1896: 212-213.
— frontalis Grouvelle, 1896: 213.
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 35
PROTOCUCUJIDAE
Ericmodes Reitter, 1878: 167
= Aporozoum Germain, 1892: 251-252.
= Protocucujus Crowson, 1955: 101.
—chilensis (Crowson, 1955): 101. (Protocu-
cujus); Crowson, 1967: 211. (Ericmodes)
— fuscitarsis Reitter, 1878: 168
—sylvaticus (Philippi € Philippi, 1864): 405-
406. (Coxelus); Germain, 1892: 252. (Aporo-
z0UM)
= Ericmodes synchitoides Reitter, 1878: 167
SPHINDIDAE
Protosphindinae
Protosphindus Sen Gupta 8 Crowson, 1979:
181-182.
— chilensis Sen Gupta € Crowson, 1979: 182.
— bellus Burakowski 8 Slipiñski, 1987: 616-
617.
CUCUJIDAE
Passandrinae
Catogenus Westwood, 1830: 221
— decoratus Newman, 1839: 303
PHLOEOSTICHIDAE
Hymaeinae
Rhopalobrachhum Boheman, 1858: 109
— clavipes Boheman, 1858: 110
CAVOGNATHIDAE
Taphropiestes Reitter, 1875: 83
—fusca Reitter, 1875: 83
BIPHYLLIDAE
Diplocoelus Reitter, 1877: 186
— foveolatus Reitter, 1877: 187
—oblongus (Germain, 1855): 396. (Philo-
phlaeus)
— tessellatus Reitter, 1877: 187
CERYLONIDAE
Ceryloninae
Philothermus Aubé, 1843: 93
-— major Grouvelle, 1898: 380.
Murmidiinae
- Murmidius Leach, 1922: 41
— globosus Hinton, 1935: 275-276.
CORYLOPHIDAE
Sericoderinae
Sericoderus Stephens, 1829: 188
— crassus Matthews, 1887: 108.
Corylophinae
Oligarthrum Matthews, 1887: 110.
— waterhouse: Matthews, 1887: 110-111.
Lapapodes Matthews, 1887: 112.
—cChilensis (Matthews, 1885): 160. (Corylo-
phodes)
Corylophodes Matthews, 1885: 160-161.
— insignis Matthews, 1887: 109-110.
COLYDIIDAE
Colydiinae
Colydiini
Aulonitum Erichson, 1845: 275
—chilense Dajoz, 1980: 335.
Aglenini
Aglenus Erichson, 1845: 275
— brunneus (Gyllenhal, 1813): 711
brunneus ssp. chilensis Dajoz, 1969: 230-232.
Synchitini
Sparactus Erichson, 1845: 256
—flexuosus (Solier, 1851): 241-242. (Endo-
phlaeus)
Lasconotus Erichson, 1845: 258
— chilensis (Grouvelle, 1898): 378. (Lado).
Endophloeus Erichson, 1845: 256
— porteri Bréthes, 1925: 200
—sharpi Reitter, 1877: 323
—angustatus Solier, 1851: 242-243. (Endo-
phlaeus: error)
Coxelini
Erylus Dajoz, 1969: 232.
— chilensis Dajoz, 1969: 232-234.
Pycnomerini
Pycnomerus Erichson, 1842: 214
— insularis Grouvelle, 1898: 380.
— germaim: Pope, 1955: 154-155.
Pycnomerodes Broun, 1886: 951
— masafuerensis Pope, 1955: 156-157.
— masatierrensis Pope, 1955: 158.
36 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
MYCETOPHAGIDAE
Mycetophagini
Mycetophagus Hellwig, 1792: 394
— chilensis Philippi €e Philippi, 1864: 376.
= M. chilensis var. sublineatus Pic, 1924: 379
Typhaea Stephens, 1830: 58
— stercorea (Linnaeus, 1758): 357; Arias éc
Dell Orto, 1983: 43. (Chile)
CIIDAE
Cis Latreille, 1796: 50
— bimaculatus Germain, 1855: 406.
— campo: Bréthes, 1924: 29-30.
— chilensis Germain, 1855: 405.
— espinosa Bréthes, 1923: 460-461.
— fernandezianus Lesne, 1924: 373-374.
— rufus Germain, 1855: 406.
RHIPIPHORIDAE
Rhipiphorinae
Macrostagon Hentz, 1830: 462
= Emenadiía Laporte, 1840: 261
— gay: (Gerstaecker, 1855): 27. (Rhipiphorus)
= Rhipiphorus rufipenne Solier, 1851: 275.
(nec Guérin, 1838)
— pectorale Pic, 1923: 15.
Rhipiphorus Bosc, 1791: 327
= Myodites Latreille, 1819: 302
= Dorthesia Say, 1823: 274
— valdivianus (Philippi, 1861): 742. (Myodhtes)
= Myodites chilensis Fairmaire 8 Germain,
1863: 258.
ADERIDAE
Dasytomorphus Fairmaire € Germain 1863:
238-239.
— ruficollis Fairmaire £e Germain, 1863: 239.
CONONOTIDAE
Lagrioida Fairmaire 8 Germain, 1860: 3-4.
— obscurella Fairmaire € Germain, 1860: 4.
— rufula Fairmaire 8 Germain, 1860: 4.
PYTHIDAE
Pilipalpinae
Pilipalpus Fairmaire, 1876: 384.
— dasytoiwdes Fairmaire, 1876: 384-385.
= Copobaenus ater Pic, 1942: 12
— maculicollas (Pic, 1942): 12 (Copobaenus)
= Pilipalpus darwini Abdullah, 1964: 8-9.
Cycloderus Solier, 1851: 252-253.
— binotatus Philippi €e Philippi, 1864: 357.
— magellanicus Philippi, 1862: 112
— plamipenmis Fairmaire €e Germain, 1863:
280-281.
— rubricollis Solier, 1851: 253-254.
— signaticollis Falrmaire € Germain, 1861: 6.
Incertae sedis
Pytoplesius Kolbe, 1907: 113.
— michaelseni Kolbe, 1907: 113.
SALPINGIDAE
Salpinginae
Lissodemini
Lissodema Curtis, 1833: 187
— glaberrima Fairmaire € Germain, 1863:
2097
Salpingini
Oncosalpingus Blair, 1919: 113, 122
— podagricus Blair, 1919: 123
Vincenzellus Reitter, 1911: 418
— andinus (Fairmaire € Germain, 1863): 272-
273. (Salpingus)
— brevirostris (Fairmaire € Germain, 1863):
274-275. (Rhinosimus)
— frigidus (Fairmaire € Germain, 1863): 273,
(Salpingus)
— variegatus (Fairmaire $ Germain, 1861): 7.
(Salpingus)
Rhinosimus Latreille, 1802: 192
— anthracinus (Fairmaire € Germain, 1861):
7. (Salpingus); Fairmaire € Germain, 1863:
274. (Rhinostmus)
—valdivianus Philippi € Philippi, 1864: 352-
353.
MYCTERIDAE
Lacconotini
Batobtus Fairmaire 8 Germain, 1863: 268-269.
= Laccoderes Champion, 1916: 106
— bicolor Fairmaire € Germain, 1863: 269-
270.
= Batobius bicolor var. mutabilis Fairmaire de
Germain, 1863: 270.
— curtus Pic, 1926: 8
— humilis Fairmaire € Germain, 1863: 270.
= Laccoderes chilensis Champion, 1916: 107
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 37
— melanurus (Champion, 1916): 144. (Lacco-
deres)
— pictus Fairmaire € Germain, 1863: 270-271.
— ruficollas Fairmaire £e Germain, 1863: 271.
—scaber (Champion, 1916): 144. (Laccoderes)
Physcius Champion, 1889: 101
— maximus Pic, 1910: 54
Suggibus Spilman, 1954: 92.
= Loboglossa Champion, 1916: 153 (nec So-
lier, 1851)
= Hybogaster Seidlitz, 1917: 93, 98 (nec Szé-
pligeti, 1906)
— muelleri (Seidlitz, 1917): 98 (Aybogaster)
— scotodoides (Seidlitz, 1917): 98 (Hybogaster)
= Loboglossa varipenis Champion, 1916:
153 (nec Solier, 1851)
Loboglossa Solier, 1851: 254-255.
— varupemis Solier, 1851: 255.
ZOPHERIDAE
Parahelopinae
Parahelops Waterhouse, 1875: 333
—angulicollis Fairmaire, 1885: 56-57
— darwini Waterhouse, 1875: 334
-—Rkuscheli Kulzer, 1963: 611-612.
— pubescens Waterhouse, 1875: 334
LAGRIIDAE
Lagrimnae
Adeliini
Adelium Kirby, 1818: 420
— aeneum Fairmaire € Germain, 1861: 5.
— chilense Kaszab, 1970: 119.
— dudichi Kaszab, 1970: 122-123.
— germaim Kaszab, 1970: 120-122.
— pena: Kaszab, 1970: 119.
— sulcatulum Fairmaire « Germain, 1860: 2.
Gondvanadelium Kaszab, 1981b: 81-82.
— gebieni Kaszab, 1981b: 83.
— seirotranoides Kaszab, 1981b: 82-83.
Lagriini
Chilenolagria Pic, 1936: 28
— limbata Pic, 1936: 29
TRACHELOSTENIDAE
Trachelostenus Solier, 1851: 255-256.
— fasciculaferus Philippi 8: Philippi, 1860: 248.
— imaequalis Solier, 1851: 256.
ARCHEOCRYPTICIDAE
Archeocrypticus Kaszab, 1964: 360-361.
— topali Kaszab, 1964: 361-364.
Enneboeus Waterhouse, 1878: 228
— baeckstroemi Pic, 1924: 380.
= Archeocrypticus chilensis Kaszab, 1969:
326-327; Kaszab, 198la: 103, 106. (Enne-
boeus). Nueva sinonima.
— patagonicus (Kaszab, 1964): 364-365. (Ar-
cheocrypticus); Kaszab, 1981la: 102, 106. (En-
neboeus)
PERIMYLOPIDAE
Hydromedion Waterhouse, 1875: 333
= Mylops Fairmaire, 1884: 499-500.
— anomocerum Fairmaire, 1885: 54.
— elongatum Waterhouse, 1875: 333.
= Hydromedion distinguendum Fairmaire,
1885: 53.
—magellanicum (Fairmaire, 1884): 500. (My-
lops)
—ooblongiusculum (Blanchard, 1853): 171 (He-
lops)
— variegatus Waterhouse, 1875: 336
Chanopterus Boheman, 1858: 98
= Chitoniscus Waterhouse, 1875: 331
— paradoxus Boheman, 1858: 98
= Chitoniscus brevipennis Waterhouse, 1875:
332
= Chitoniscus brevissimus Fairmaire, 1891:
39
STREPSIPTERA
HALICTOPHAGIDAE
Halictophagus Curtis, 1832: 433
— chilensis Hofmann, 1965: 36
STYLOPIDAE
Xenos Rossi, 1790: 114
— boharti Hofmann, 1965: 35-36.
Pseudoxenos Saunders, 1872: 44
—prolificum Tesón € de Remes Lenicov,
1979: 115-116, 118.
38 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
RECUENTO DEL NUMERO DE GENEROS Y ESPECIES
POR FAMILIAS DE COLEOPTERA PRESENTES EN CHILE
Familia No gén O Nespp O Familia UN gn O NO sppd
Cupedidae ] 1 Bostrichidae 10 14
Paussidae 9 3 Anobiidae 99 97
Cicindelidae 4 6 Ptinidae 4 91
Carabidae 76 331 Peltidae 4 10
Trachypachidae 1 Trogossitidae 4 12
Haliplidae 1 Cleridae 5 61
Dytiscidae 10 Melyridae 5 66
Gyrinidae 3 Lymexylidae 1 1
Hydraenidae 9 Nitidulidae 9 43
Hydrochidae 1 Rhizophagidae 9 4
Georyssidae' Protocucujidae 1 3
Hydrophilidae Sphindidae 1 9
Histeridae Cucujidae 1 1
Ptiliidae Phloeostichidae 1 1
Leiodidae Silvanidae 8 13
Scydmaenidae Cavognathidae 1 ]
Silphidae Cryptophagidae 6 18
Staphylinidae Biphyllidae 1 3
Pselaphidae Languriidae 4 14
Clambidae? Erotylidae 7 9
Eucinetidae' Cerylonidae 9 9
Scirtidae 3 Corylophidae 4 4
Dascillidae 1 Coccinellidae 33 76
Karumiidae 1 Merophysiidae 2 4
Rhipiceridae 1 Lathridiidae 15 51
Lucanidae 6 Colydiidae 8 19
Trogidae 1 Mycetophagidae 9 9
Ceratocanthidae 9 Ciidae 1 6
Hybosoridae 1 Melandryidae 6 18
Glaphyridae 9 11 Mordellidae 5 39
Scarabaeidae 51 181 Rhipiphoridae 9 3
Byrrhidae 9 9 Oedemeridae 11 17
Psephenidae 3 3 Anthicidae 7) 19
Elminthidae 5 19 Aderidae 1 1
Dryopidae 9 3 Cononotidae 1 9
Limnichidae' pe, E Meloidae 11 31
Heteroceridae 2 9 Scraptiidae 3 11
Buprestidae 21 67 Pythidae 3 8
Cebrionidae l 1 Salpingidae 4 8
Elateridae 44 106 Mycteridae 4 9
Throscidae? A 2 Zopheridae 1 4
Eucnemidae 4 6 Lagriidae 3 9
Lycidae 1 1 Trachelostenidae 1 9
Phengodidae 4 16 Tenebrionidae 85 465
Lampyridae 4 18 Archeocrypticidae 9 3
Cantharidae 19 63 Chalcodryidae ] ]
Derodontidae 1 3 Perimylopidae 2 6
Dermestidae 5 15 Cerambycidae 72 176
Bruchidae 9 30
Chrysomelidae 59 124
Total familias: 105 Nemonychidae 4 115
Total géneros: 1.139 Anthribidae 7 16
Total especies: 3.730 Belidae 3 5
'Material no identificado a nivel específico (Museo Oxycorynidae ] E)
Nacional de Historia Natural, Santiago-Chile). Attelabidae 1 4
“Cita de Ashworth £: Hoganson (1987). Apionidae 3 8
Luis Peña G. (comunicación personal). Curculionidae 136 432
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 39
AGRADECIMIENTOS
Al profesor Jaime Solervicens A. (Instituto de
Entomología, Universidad Metropolitana de
Ciencias de la Educación) por sus valiosas su-
gerencias, revisión de la versión final y colabo-
ración en la etapa de recopilación de antece-
dentes.
Al Dr. Ariel Camousseight M. (Sección En-
tomología, Museo Nacional de Historia Natu-
ral) por su decidido apoyo, comentarios y lec-
tura crítica de las versiones iniciales de este
aporte.
Por su desinteresado apoyo en los aspectos
documentales, expresamos nuestra gratitud a
los doctores Robin Craw y J. Charles Watt
(CSIRO, New Zealand), Mauro Daccordi(Mu-
seo Civico di Storia Naturale di Verona, Ita-
lia), Robert D. Gordon, John M. Kingsolver y
Richard E. White (USDA/SEL, USA), Alfred
F. Newton jr. y Margareth K. Thayer (Field
Museum of Natural History, USA), Charles
W. O'Brien y Guillermo J. Wibmer (Florida A
€ M University, USA), Darren A. Pollock
(University of Alberta, Canadá), Randall T.
Schuh (American Museum of Natural Histo-
ry, USA), Tapan Sen Gupta (Zoological Sur-
vey, India), Stanislaw A. Slipiñski (Instytut
Zoologi PAN, Polonia) y a nuestros connacio-
nales Ing. Agr. Elizabeth Arias (U. de Talca),
Sr. Tomás Cekalovié (U. de Concepción), Sr.
Tomás Moore (CMPC, Laja), Sr. Luis Peña
(Santiago), Prof. Francisco Sáiz (U. Católica de
Valparaíso).
Por la donación de copias de sus aportes
originales, agradecemos a los doctores: A.
Ashworth (North Dakota State University,
USA), H.P. Brown (University of Oklahoma,
USA), T.L. Erwin (U.S. National Museum,
USA), H. Freude (Zool. Staatssamlung Mún-
chen, Alemania), H.F. Howden (Carleton
University, Canadá), J. Jelíneck (National Mu-
seum (Nat. Hist.), Checoslovaquia), C. John-
son (Manchester Museum, Inglaterra), C.
Klein K. (Misión Técnica Alemana, Ecuador),
J.F. Lawrence (CSIRO, Australia), J. Mateu
(Est. Exp. de Zonas Aridas, España), O. Merkl
(Hungarian Nat. Hist. Museum, Hungría),
N.B. Nikitsky (Zoological Museum of Moscow
University, USSR), G.R. Noonan (Milwaukee
Public Museum, USA), R. Pace (Museo Civico
di Storia Naturale di Verona, Italia), W. Rhúm
(Zool. Inst. u Zool. Mus. Univ. Hamburg, Ale-
mania), R.E. Roughley (University of Manito-
ba, Canadá), D.P. Wooldridge (Pennsylvania
State University, USA).
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mol. Soc., 46(1): 116-123.
Woob, S.L. 1973. On the taxonomix status of Platypodi-
dae and Scolytidae (Coleoptera). Great Basin Nat.,
33(2): 77-89.
ZuNINO, M. 1984. Analisi sistematica e zoogeografica della
sottofamiglia Taurocerastinae Germain (Coleoptera:
Scarabaeoidea: Geotrupidae). Boll. Mus. Reg. Sci. Nat.
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ZúñIGA S., E. 1985. Ochenta años de control biológico en
Chile. Revisión histórica y evaluación de los proyectos
desarrollados (1903-1983). Agric. Técn. Chile, 45(3):
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ZÚNIGA S., E.: R. VAN DEN Bosch; J.]. DREA 8 F. GRUBER.
1986a. Control biológico de los áfidos (Hom. Aphidi-
dae) de los cereales en Chile. II. Obtención, introduc-
ción y cuarentena de depredadores y parasitoides.
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 53
Agric. Técn. Chile, 46(4): 479-487. cereales en Chile. 111. Multiplicación y producción
ZúÑIGA S., E.; H. Susuki S. 8c R. VarGas M. 1986b. Con- masiva de depredadores y parasitoides introducidos.
trol biológico de los áfidos (Hom., Aphididae) de los Agric. Técn. Chile, 46(4): 489-494.
INDICE ALFABETICO DE LOS TAXA CITADOS
Acalanthis 20 APIONIDAE 9, 31, 38
Acalles 32 Apocnemidophorus 31
Acalodegma 28 Aporozoum 35
ACANTHOCERIDAE 7, 15 Apterodorcus 15
ACANTHOCNEMIDAE 8 Araecerus 30
Acanthoscelides 29 ARCHEOCRYPTICIDAE 5, 9, 27, 37, 38
Achopera 31 ARCHEOCRYPTICINI 28
Acropteron 27 Archeocrypticus 5, 28, 37
Acrotrichis 33 ARCHOSTEMATA 7, 9
Acrotripteryx 33 ARTEMATOPIDAE 8
ACULAGNATHIDAE 8 ARTEMATOPOIDEA 8, 16
Adelium 27, 37 Arthrobrachus 20
ADEPHAGA 7, 9 Arthroplatus 27
ADERIDAE 9, 25, 36, 38 ASPIDIPHORIDAE 8
AEGIALITIDAE 9 Astylus 20
Aegorhinus 31, 32 ATERPINAE 31, 32
Afrasidia 27 Atractuchus 30
Agametrus 11 Atractocerus 21, 34
AGLENINI 35 ATTELABIDAE 9, 30, 38
Aglenus 35 Aulontum 35
AGLYCYDERIDAE 9 Australocerambyx 32
AGYRTIDAE 7 Austrelmis 16
Ahasverus 22 Austrolimnius 16
ALLECULIDAE 9, 27 Azya 23
ALLECULINAE 27
ALLOCORYNIDAE 9 BARIDINAE 31
Amecocerus 20 Batobius 24, 36
Amomphopalpus 24 BELIDAE 9, 30, 38
AMPHIZOIDAE 7 Bidessus 11
Amydropa 22 BIPHYLLIDAE 5, 8, 22, 35, 38
Ananca 24 BOGANIIDAE 8
Anoylotela 17 Bolborhinum 15
ANISOTOMIDAE 7 BORIDAE 9, 26
ANOBIIDAE 8, 19, 38 BOSTRICHIDAE 8, 19, 38
Anorus 14 BOSTRICHOIDEA 8, 18, 19
ANTHICIDAE 9, 25, 26, 38 BOSTRYCHIDAE 8
Anthicoxenus 25 BOTHRIDERIDAE 8
ANTHONOMINAE 31 Brachidia 5, 20
Anthonomus Brachyhelops 27, 29
ANTHRIBIDAE 9, 30, 38 Brachymys 33
Anticura 12 BRACHYPSECTRIDAE 8
Antixoon 19, 34 BRATHINIDAE 7
Apion 31 BRENTHIDAE 9
54 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
BRENTIDAE 9 Chilenius 19
BRUCHIDAE 9), 28, 29, 38 Chilenogemus 19
BUPRESTIDAE 8, 17, 38 Chilenolagria 27, 37
BUPRESTOIDEA 8, 17 Chilioclerus 20
BYRRHIDAE 7, 16, 33, 38 Chiloea 17
BYRRHINAE 33 CHILOEIDAE 8, 17
Byrrhocerus 16 Chitoniscus 37
BYRRHOIDEA 7, 16 CHOLEVIDAE 7
BYTURIDAE 8, 22 CHRYSOMELIDAE 9, 27, 29, 38
CHRYSOMELOIDEA 9, 28
Caenominurus 31 Cicindela 10
Calendyma 20 CICINDELIDAE 7, 9, 10, 38
Calopteron 18 Cicindelidia 10
Callideriphus 29 CIIDAE 5, 8, 24, 36, 38
CALLIRHIPIDAE 8, 16 CIRCAEIDAE 9
Callirhynchinus 30 Circapion 31
CALYPTOMERIDAE 7 Cis 5, 24, 36
CAMIARIDAE 7, 13 CISIDAE 8
CANTHARIDAE 8, 18, 38 Cladodes 18
CANTHAROIDEA 8, 17 CLAMBIDAE 7, 12, 14, 38
Canthydrus 11 CLAVICORNIA 8, 21
CARABIDAE 7, 9, 10, 38 CLAVIGERIDAE 7
CARABOIDEA 7, 9 CLERIDAE 8, 20, 38
Cardiogenus 27 CLEROIDEA 8, 18, 19
Carpophilus 21 CNEOGLOSSIDAE 8
CATERETINAE 8 Coccidophilus 23
Catogenus 21, 35 COCCINELLIDAE 8, 23, 38
CATOPIDAE 7, 13 Cochliarion 13
CAVOGNATHIDAE 8, 22, 35, 38 Coilodes 33
CEBRIONIDAE 8, 17, 38 COLONIDAE 7, 13
CEPHALOIDAE 8 COLYDIIDAE 5, 8, 24, 35, 38
CEPHALOPLECTIDAE 7 COLYDIINAE 35
Cephaloscymnus 23 COLYDIINI 35
CERAMBYCIDAE 9, 28, 32, 38 CONONOTIDAE 9, 25, 36, 38
CERATOCANTHIDAE 7, 15, 33, 38 Copelatus 11
Ceratognathus 15 COPOBAENINAE 25
Cercyon 12 Copobaenus 25, 36
Ceroglossus 10 Corimthiscus 20
CEROPHYTIDAE 8, 17 Corrhecerus 30
CERYLONIDAE 8, 23, 35, 38 Corticomus 20
CERYLONINAE 35 CORYLOPHIDAE 8, 23, 35, 38
CEUTORHYNCHINAE 31 CORYLOPHINAE 35
CHAETOSOMATIDAE 8 Corylophodes 35
CHALCODRYIDAE 9, 25, 27, 28, 38 COSSONINAE 31
Chalcolepidius 17 COXELINI 35
Chanopterus 28, 37 “Cratoscelis 33
CHAULIOGNATHIDAE 8 Cregya 20
Cheloderus 28, 29 Creophalus 13
CHELONARIIDAE 7 Cryptamorpha 22
Chelymorpha 29 Cryptolaemus 23
Chiasognathus 15 Eryptolestes 22
Chilapion 31 CRYPTOPHAGIDAE 8, 22, 38
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 55
Cryptophagus 22 Dorotheus 32
CRYPTOPHILIDAE 8 Dorthesia 36
CRYPTORHINCHINAE 31, 32 DRILIDAE 8
CUCUJIDAE 8, 21, 22, 35, 38 DRYOPHTHORINAE 31
CUCUJOIDEA 8, 21 DRYOPIDAE 8, 16, 38
CUPEDIDAE 7, 9, 32, 38 DRYOPOIDEA 7, 16
CUPEDOIDEA 7, 9 DYTISCIDAE 7, 11, 38
CURCULIONIDAE 5, 9, 31, 32, 38
CURCULIONINAE 31 Ectopria 14, 34
CURCULIONOIDEA 9, 30 Efflagitatus 34
Curinus 23 ELACATIDAE 9
CYATHOCERIDAE 7 ELATERIDAE 8, 17, 38
CYBOCEPHALINAE 8 ELATEROIDEA 8, 17
Cybocephalus 21 ELMIDAE 8
Cycloderus 24, 26, 36 ELMINTHIDAE 8, 16, 38
Cylorygmus 12 Elmis 16
Cylydrorhinus 32 Elsianus 16
CYPHALEINI 28 Emenadia 36
Cyphaleus 28 EMPELIDAE 7
Cyphometopus 31 Emphytoecia 29
CYPHONIDAE 7, 14 Emphytoecides 29
ENDOMYCHIDAE 8
DACODERIDAE 9 Endophlaeus (error) 35
Dapoha 23 Endophloeus 5, 24, 35
DASCILLIDAE 7, 14, 16, 33, 38 Enneboeus 5, 28, 37
DASCILLINAE 33 ENTIMINAE 31, 32
DASCILLINI 33 Epicauta 25
DASCILLOIDEA 7, 12, 14 Epiclines 20
Dascillus 33 Epistomentis 17
DASYCERIDAE 7 Ericmodes 21, 35
Dasytes 20 ERIRHININAE 31
DASYTIDAE 8 EROTYLIDAE 8, 23, 38
Dasytomorphus 36 Erylus 35
DECAMERINAE 19, 34 EUBRIANACINAE 33
Decamerus 18, 19, 34 Eubrianax 14, 33
DERMESTIDAE 8, 18, 19, 38 EUBRIINAE 7, 34
DERMESTOIDEA 8, 18 EUCINETIDAE 5, 7, 14, 38
DERODONTIDAE 8, 18, 34, 38 EUCINETOIDEA 7, 12, 14
DERODONTINAE 34 EUCNEMIDAE 8, 17, 38
Desmopachria 11 EUGLENIDAE 9
Dicordylus 30 Eugnamptoplesus 31
Dictyneis 29 EUGNOMINAE 31
Dinocentrus 30 EULICHADIDAE 7
Diodontolobus 18, 34 Europs 34
Diontolobus 18, 19, 34 EURYGENIINAE 25
Dioria 23 Eurymetomorphon 20
DIPHYLLOSTOMATIDAE 7 Eurymetopum 20
Diplocoelus 27, 35 EURYPOGONIDAE 8
DISCOLOMIDAE 8 EURYSTETHIDAE 9
DISTENIIDAE 9, 28
DOLOSIDAE 8 Frickius 15, 16
Dolphus 27 Fusicornis 34
56
GENECERINI 33
Gemiocremnus 31
GEORYSSIDAE 5, 7, 12, 38
GEOTRUPIDAE 7, 14, 16
GEOTRUPINI 16
Germaimus 31
Germarostes 33
GLAPHYRIDAE 7, 15, 33, 38
GLAPHYRINI 33
GLARESIDAE 7, 14, 38
Glyptolopus 21
Glyptoscelas 29
Gondvanadelium 27, 37
Gradus 34
Gymnochthebius 11, 12
Gyretes 11
GYRINIDAE 7, 11, 38
Halecia 17
HALICTOPHAGIDAE 37
Halctophagus 37
HALIPLIDAE 7, 11, 38
Haliplus 11
HELMINTHIDAE 8
HELODIDAE 7, 14
HELOTIDAE 8
Hemiosus 12
HEMIPEPLIDAE 9
HETEROCERIDAE 8, 17, 34, 38
HETEROMERA 8, 21, 22, 24
HISTERIDAE 7, 12, 38
HISTEROIDEA 7, 12
HOBARTIDAE 8
Holoparamecus 24
Holopteridius 29
Holopterus 29
HOMALISIDAE 8
Hybogaster 26, 37
HYBOSORIDAE 7, 15, 33, 38
Hydnobrus 13
Hydraenida 12
HYDRAENIDAE 7, 11, 13, 38
HYDROCHIDAE 7, 12, 38
Hydrochus 12
Hydromedion 28, 37
HYDROPHILIDAE 7, 12, 38
HYDROPHILOIDEA 7, 11
HYDROSCAPHIDAE 7
HYGROBIIDAE 7
HYLIOTINAE 22
HYLOPHILIDAE 9
Hylotrupes 29
Rev. Chilena Ent. 17, 1989
HYMAEINAE 35
Hyperaspis 23
Hyplathrinus 24
HYPOCOPRIDAE 8
Inhumeroclerus 20
INOPEPLIDAE 9
JACOBSONIIDAE 8
JUANORHININAE 31
KARUMIIDAE 7, 14, 33, 38
Korynetes 20
Laccoderes 36, 37
LACCONOTINI 26, 36
Laccornellus 11
Laccornis 11
LAGRIIDAE 9, 25, 26, 27, 37, 38
LAGRIINAE 37
LAGRIINI 37
Lagrioida 25, 36
LAGRIOIDINAE 25
LAMINGTONIIDAE 8
LAMPYRIDAE 8, 18, 38
Lancetes 11
LANGURIIDAE 5, 8, 22, 23, 38
Lapapodes 35
Lasconotus 35
LATHRIDIIDAE 5, 8, 24, 38
Lebasiella 20
Lederia 24
LEIODIDAE 7, 13, 38
LEPICERIDAE 7
LEPTINIDAE 7
LEPTODIRIDAE 7
Lichma 33
LICHNINI 33
LIMNEBIIDAE 7
LIMNICHIDAE 5, 8, 17, 38
Limnichus 17
LIMULODIDAE 7
Liodessus 11
LIODIDAE 7
Lissodema 36
LISSODEMINI 36
Listroderes 32
Lithraeus 29
LOBERINAE 8
Loberoschema 22, 23
Loberus 22, 23
Loboglossa 24, 26, 37
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 57
Lobosternum 22, 23
LOPHOCATERIDAE 8
LUCANIDAE 7, 15, 38
Lucidota 18
LUTROCHIDAE 8
LYCIDAE 8, 18, 38
LYCTIDAE 8
LYCTINAE 19
Lyctus 19
LYMEXYLIDAE 8, 20, 34, 38
LYMEXYLOIDEA 8, 20, 32
Lyttomeloe 25
Macrelmis 16
Macrogaster 34
Macrosiagon 36
Macrostyphlus 32
MAGDALIDINAE 31
MALACHIIDAE 8, 26
MALACHIINAE 20
Malaiserhinus 31
Mallochira 24
Martinezostes 33
MASTINOCERINI 34
Mastinocerus 18, 34
Mastinomorphus 34
Mecomacer 30
Mecopselaphus 24
Megacerus 29
Megadytes 11
MEGALOPODIDAE 9
Megathopa 16
MELANDRYIDAE 8, 24, 38
Melanophthalma 5, 24
MELOIDAE 5, 9, 25, 38
MELYRIDAE 5, 8, 20, 26, 38
MEROPHYSIIDAE 8, 23, 38
MEROPHYSIINAE 23, 24
MERYCIDAE 8
Maicrohydnobrus 13
MICROMALTHIDAE 7
Macropeltis 34
MICROPEPLIDAE 7
Maicroplophorus 29
Minurus 31
Mitraelabrus 25
MOLYTINAE 31
MONOMMIDAE 9
Monophylla 20
Monotoma 34
MONOTOMIDAE 8
MONOTOMINAE 21, 34
MORDELLIDAE 8, 24, 38
Morychastes 33
Murmidimae 35
Murmidius 23, 35
MYCETOPHAGIDAE 8, 24, 36, 38
MYCETOPHAGINAE 36
Mycetophagus 36
MYCTERIDAE 9, 24, 26, 36, 38
MYCTERINAE 24
Mylassa 29
Mylops 37
Myodytes 36
MYXOPHAGA 7, 9
Nannomacer 30
Natalis 20
Naupactus 5, 31
Necrobia 20
Nemacerus 20, 26
Nematocerus 20, 26
NEMONYCHIDAE 9, 30, 38
Neohebestola 29
Neohydnobrus 13
Neolichnmia 33
Neopachytychius 5, 31
Neophengus 34
Neopylus 20
Nephrosis 5, 25
Nicrophorus 13
NILIONIDAE 9
NIPONIIDAE 7
Nimales 5, 25
NITIDULIDAE 8, 21, 38
NITIDULINAE 21
NOSODENDRIDAE 8
NOTERIDAE 7
Nothoderodontus 34
Nothorhyzobius 23
NOTIOPHYGIDAE 8
Notocymatodera 20
Ochthebius 11
OCHODAEIDAE 7, 16
OEDEMERIDAE 5, 9, 24, 25, 26, 38
Oligarthrum 35
Oligorrhina 5, 25
OMETHIDAE 8
OMMADIDAE 7, 9
OMMATIDAE 7, 9
Oncosalpingus 36
Opisolia 30
Orchesia 24
58 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Ormiscus 30
ORTHOPERIDAE 8, 23
Oryzaephilus 22
OTHNIIDAE 9
Ottorhynchus 31
Oxelytrum 5, 13
Oxycraspedus 30
OXYCORYNIDAE 9, 30, 38
Oxymastinocerus 34
OXYPELTINAE 28
OXYPORIDAE 12
OXYTELIDAE 12
OZAENINAE 7, 10, 32
Pachybrachis 29
Pachymys 33
Pachyteles 10, 33
Parabrontes 22
Paracymus 12
PARAHELOPINAE 37
Parahelops 37
Paraholopterus 29
Parischnolea 29
PASSALIDAE 7
PASSANDRIDAE 8
PASSANDRINAE 21, 35
PAUSSIDAE 7, 10, 32, 38
PEDILIDAE 9, 26
PELTIDAE 8, 18, 19, 34, 38
Peltostoma 34
Pentatemnus 31
PERIMYLOPIDAE 9, 27, 28, 37, 38
PEROTHOPIDAE 8
PETALOCHILINAE 31
PHALACRIDAE 8
Phanodesta 20
PHENGODIDAE 8, 18, 34, 38
Philophlaeus 5, 23, 25
Philothermus 35
PHLOEOSTICHIDAE 8, 22, 24, 26, 35, 38
PHLOIOPHILIDAE 8
PHYCOSECIDAE 8
Physcius 37
PILIPALPIDAE 9, 26
PILIPALPINAE 26, 36
Pilipalpus 25, 26, 36
PLASTOCERIDAE 8
Platyaspistes 31
PLATYPODIDAE 9
PLATYSTOMIDAE 9
PLEOCOMIDAE 7
Pleolobus 14, 33
Polycaon 19
POLYDROSINAE 31
Polymertus 14, 33
Polynoncus 15
POLYPHAGA 7, 9, 11
Procalus 29
Prolixocupes 9, 32
Promecheilus 5, 25
Promechochilus 25
PROPALTICIDAE 8
Proscopus 30
PROSTOMIDAE 8
PROTERHINIDAE 9
PROTOCUCUJIDAE 8, 21, 35, 38
Protocucujus 21, 35
Protopsilapha 29
PROTOSPHINDINAE 21, 35
Protosphindus 21, 35
PSAMMOECINAE 22
Psammoecus 22
PSELAPHIDAE 7, 12, 14, 38
PSEPHENIDAE 7, 16, 33, 38
Pseudadoma 23
Pseudenneboeus 28
Pseudochrodes 22
Pseudomeloe 5, 25
Pseudopachymerina 29
Pseudoxenos 37
PTEROGENIIDAE 8
PTILIIDAE 7, 13, 33, 38
PTILODACTYLIDAE 7
Ptinella 33
PTINIDAE 8, 19, 38
Pycnochila 10
PYCNOMERINI 35
Pycnomerodes 35
Pycnomerus 35
Pycnosiphorus 15
Pyractena 18
Pyractonema 18
PYROCHROIDAE 9, 25, 26
PYTHIDAE 9, 24, 25, 26, 27, 28, 36, 38
Pythoplesius 26, 36
RENTONIINAE 34
RENTONIINI 34
Rentontum 19, 34
Rhantus 11
RHINOMACERIDAE 9
Rhinosimus 36
Rhipibruchus 29
RHIPICERIDAE 7, 14, 33, 38
Elgueta y Arriagada: Conocimiento actual Coleoptera de Chile 59
RHIPIPHORIDAE 8, 24, 36, 38 SPHINDIDAE 8, 21, 35, 38
RIPHIPHORINAE 36 STAPHYLINIDAE 7, 12, 13, 38
Rhipiphorus 36 STAPHYLINOIDEA 7, 12, 13
RHIZOPHAGIDAE 8, 21, 34, 38 Stenocebrio 17
Rhopalobrachuum 24, 26, 35 Strangaliodes 31
Rhyephenes 31 STREPSIPTERA 20, 32, 37
RHYNCHITIDAE 9 Streptocerus 15
Rhynchitomacer 30 STYLOPIDAE 20, 32, 37
Rhynchitomacerinus 30 STYLOPOIDEA 32
RHYNCHOPHORINAE 31 Suggibus 26, 37
RHYSODIDAE 7 SYNCHITINI 35
RHYTIRRHININAE 31, 32 SYNCHROIDAE 8
Rodoha 23 SYNTELIIDAE 7, 12
Systolosoma 11, 33
SALPINGIDAE 9, 25, 26, 36, 38
SALPINGINAE 26, 36 Taphropiestes 22, 35
SALPINGINI 36 Taurocerastes 15, 16
SANDALIDAE 7 TELEGEUSIDAE 8
SAROTHRIIDAE 8 TELEPHORIDAE 8
SCAPHIDIIDAE 7, 13 TEMNOCHILIDAE 8
SCAPHIDIINAE 13 TENEBRIONIDAE 9, 26, 27, 28, 29, 38
SCARABAEIDAE 7, 15, 38 TENEBRIONOIDEA 8, 21, 22, 24
SCARABAEOIDEA 7, 14 Tenebrordes 20
SCIRTIDAE 7, 14, 16, 38 Teropalpus 13
Sclerostomus 15 Tetraonyx 25
SCOLYTIDAE 9 TETRAPHALERIDAE 7, 9
SCOLYTINAE 31, 32 TETRATOMIDAE 8
Scraptia 26 THORICTIDAE 8
SCRAPTIIDAE 9, 26, 38 THROSCIDAE 8, 17, 38
Scutobruchus 29 Throscidium 33
SCYDMAENIDAE 7, 13, 38 Tolmetes 26
SERICODERINAE 35 TORAMINAE 8
Sericoderus 35 Toramus 22, 23
SERROPALPIDAE 8 TORRIDINCOLIDAE 7
Serropalpus 24 | TRACHELOSTENIDAE 9, 27, 37, 38
SILPHIDAE 5, 7, 13, 38 TRACHELOSTENINAE 27
SILVANIDAE 8, 21, 22, 38 Trachelostenus 27, 37
SILVANINAE 22 TRACHYPACHIDAE 7, 10, 33, 38
Silvanus 22 TRACHYPACHINI 33
Silviella 20 Trachypachus 11
Sistellorhynchus 30 TRETOTHORACIDAE 9
Sitophilus 31 Trichophthalmus 30
SMICRIPIDAE 8 TRICTENOTOMIDAE 9
Solervicensia 20 Tngonogenius 19
Sosteamorphus 17 TRIXAGIDAE 8
Sparactus 35 TROGIDAE 7, 15, 38
SPERCHEIDAE 7 TROGOSSITIDAE 8, 19, 20, 38
SPHAERIIDAE 7 Tropideres 30
SPHAERIOIDEA 7 Tropisternus 12
SPHAERITIDAE 7, 12 Tropopsis 10, 32, 33
SPHAEROSOMATIDAE 8 Trox 1
Sphaenognathus 15, 18 Tychepsephenus 34
60 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Tychepsephus 16, 34 Vesta 18
TYCHIINAE 31 Vincenzellus 36
Typhaea 36 Xenos 37
Xylita 24
Uleiota 8, 22 XILOPHILIDAE 9
ULEIOTINAE 8, 22 ZARUDNIOLIDAE 7
URODONTIDAE 9 ZOPHERIDAE 9, 26, 27, 37, 38
BOSTRICHIDAE: LYCTINAE: Lyctus chilensis Gerberg (ver página 19).
Estando en prensa este trabajo, gracias a la gentil colaboración del Dr. John M.
Kingsolver (USDA, PSI, SEL-USA), hemos podido conocer el trabajo en referen-
cia (GERBERG, E.]. 1957. A revision of the New World species of powder-post
beetles belonging to the family Lyctidae. U.S. Department of Agriculture, Tech-
nical Bulletin (1157): 1-55, pls. 1-14); en dicho aporte se citan para Chile a Lyctus
cinereus Blanchard y la nueva especie L. chilensis Gerberg. Así entonces, esta
familia estaría representada en nuestro país por 15 especies repartidas en 10
géneros.
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 61-63
CICLO ESTACIONAL DE SCHIZOCHELUS SERRATUS PHIL.
(COLEOPTERA: SCARABAEIDAE)
ERNESTO CISTERNAS A.! y ROBERTO CARRILLO tus
RESUMEN
En una investigación sobre el ciclo estacional de $. serratus, utilizando una pradera mixta en la comuna
de Puerto Varas, se determinó que bajo las condiciones del lugar esta especie se comporta como
univoltina.
El vuelo de los adultos ocurre en primavera (octubre). Las larvas están presentes desde fines de
noviembre hasta mediados de septiembre y el estado pupal desde fines de julio a principios de octubre.
De los tres estadios larvales, el tercero fue el de mayor duración.
ABSTRACT
S. serratus behaves as a univoltine species under the conditions of Puerto Varas, Chile (latitude 40%20' S
and longitude 73%07' W). Adult flying period occurs in spring (October). Larvae were found from late
November until the middle of September and pupae from the end of July to the first part of October.
The duration of the third instar larva was longer than that of previous instars.
INTRODUCCION
La familia Scarabaeidae presenta una serie de
especies, que en su estados inmaduros viven
asociados al sistema radical de forrajeras nati-
vas e introducidas. Las larvas de estas especies,
ocasionalmente alcanzan densidades que afec-
tan el crecimiento y sobrevivencia de las plan-
tas en praderas y sementeras.
El hecho de constituir plagas insectiles de
importancia agrícola, en alguna medida ha
incentivado el estudio de sus ciclos estaciona-
les. Ritcher (1966) señala que los ciclos estacio-
nales de las larvas de escarabeidos pueden ser
anuales, bienales o trienales. En Chile, Durán
(1952, 1954 y 1964) estudió el ciclo estacional
de las especies Hylamorpha elegans (Burm.),
Phytholoema herrmanni Germ. y Sericoides ger-
mani D.T., correspondiendo todas ellas a espe-
cies anuales o univoltinas, en cuanto a la dura-
ción de su ciclo de vida.
En el año 1985, se observó la presencia de
'INIA, Estación Experimental Remehue, Casilla 24-0,
Osorno-Chile.
“Universidad Austral de Chile, Casilla 567, Valdivia-
Chile.
(Recibido: 9 de diciembre de 1988. Aceptado: 15 de
septiembre de 1989).
altas poblaciones de larvas de gusanos blancos
asociados a praderas en la zona de Puerto
Varas, cuyas características morfológicas no
correspondían a las especies señaladas ante-
riormente. Criadas en el laboratorio estas lar-
vas, se obtuvieron adultos de la especie $. se-
rratus Phil. Debido a que se desconocían ante-
cedentes de su biología, se realizó un estudio a
fin de determinar su ciclo estacional.
MATERIALES Y METODOS
La investigación se realizó en una pradera
mixta (Trifolium repens), en el predio Potrero
Viejo, comuna de Puerto Varas, Provincia de
Llanquihue. Se tomaron entre 5 y 15 muestras
de suelo de 20 x 20 x 20 cm de profundidad
cada 30 días, con la excepción del momento en
que se observó individuos en estado de pupa y
primeros estadios larvales, momento en el
cual, las observaciones se hicieron cada 15
días. El estudio se inició a fines de 1986 exten-
diéndose hasta principios de 1988.
La identificación de los distintos estados y
estadios de la especie en estudio, se realizó
utilizando la descripción de los estados inma-
duros de esta especie, dada por Cisternas
(1986).
62
RESULTADOS Y DISCUSION
S. serratus, al igual que las otras especies de
escarabeidos que han sido estudiadas en el
país, se comporta como una especie univol-
tina.
El estado de larva fue encontrado desde
fines del mes de noviembre hasta fines del mes
de septiembre del año siguiente. La fase afaga
del tercer estadio larval, que correspondería al
estado de prepupa, se presentó desde fines de
junio hasta mediados de septiembre. Las pu-
pas fueron encontradas desde fines de julio
hasta fines de septiembre. Los adultos fueron
observados desde los primeros días de octubre
hasta fines de dicho mes (Fig. 1).
El estado larval, al igual que en otros escara-
beidos, presenta tres estadios. El primer esta-
dio larval se encuentra desde fines de noviem-
bre hasta mediados de enero. Recuentos reali-
MS 0 E A
==
Cn
SS
N D E F M A M
(Meses)
y J A Ss 0
Figura 1. Ciclo y Fenología Estacional de $. serratus Phil.
(Pto. Varas).
UN ES L3
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
LILLO ELUD DOLL IL Í AL LÍO)
> TZ LLO LE LELELE LLL LEÓN
Porcentaje de los distintos estados (%)
> VA Z LLL LLL LLLL LA ELIÍN
Ene. Abr.
==
En
DELE DELLE LILLE
Mar.
Prepupa E Pupa
N
N
N
Ñ
N
N
0
Jun.
AS 7
Rev. Chilena Ent. 17, 1989
zados a mediados de enero, mostraron que en
dicho mes aún cuando una pequeña parte de
la población permanecía en el primer estadio,
la mayor parte de la población había alcanza-
do el segundo estadio larval, forma ésta pre-
dominante desde mediados de enero hasta
fines de febrero, la presencia de larvas de se-
gundo estadio ocurrió hasta fines del mes de
abril. El tercer estadio larval se presentó desde
fines de febrero hasta mediados de septiem-
bre. Desde mediados de marzo (1987) o fines
de febrero (1988) el tercer estadio larval fue la
forma dominante hasta fines de julio (1987)
(Fig. 2).
La falta de antecedentes graficados en la
Fig. 2, en diciembre de 1986 y enero de 1988,
indican la ausencia de material en las muestras
tomadas.
De acuerdo a los resultados obtenidos es
posible estimar que el estado larval tiene una
duración de 8,5 meses aproximadamente, co-
rrespondiéndole un mes y medio al primer
estadio, tres meses al segundo estadio y cuatro
al tercer estadio. Los estadios segundo y terce-
ro son los de mayor duración y también los
más importantes desde el punto de vista del
daño ya que en ellos la larva se está alimentan-
do de las raíces. Estos antecedentes de la dura-
ción O permanencia relativa de los estadios
larvales concuerda con lo observado por
Hayes (1929) en otras larvas de escarabeidos.
La fase afaga del tercer estadio larval, que
también se denomina prepupa, tuvo una du-
ración relativa de alrededor de 30 días.
MN Adulto
|
VISO LLE LO 2 dE 2 DARIA AS
|
y
Sep.
Jul. Oct. Ene. * Feb.
1988
Ago. Nov. * Dic.
Figura 2. Frecuencia relativa a través del año, de los estadios larvarios, pupa y adulto de $. serratus Phil.
Cisternas y Carrillo: Ciclo de Schizochelus serratus Phil. 63
El estado pupal fue la forma predominante
en el mes de septiembre, con una duración de
aproximadamente 45 días.
Los adultos fueron encontrados en octu-
bre, en el interior del suelo. Suponiendo que
las hembras sean capaces de oviponer inme-
diatamente después de emergidas, la postura
de huevos debería comenzar en el mes de oc-
tubre y la emergencia de las primeras larvas
desde mediados de noviembre.
AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecen al Instituto de Investi-
gaciones Agropecuarias, a la Dirección de In-
vestigación y Convenios de la Universidad
Austral de Chile, Proyecto RS 86-2 y al Sr.
Alberto Neumann, propietario del predio, el
apoyo prestado a la realización de esta invest1-
gación.
LITERATURA CITADA
CISTERNAS A., E. 1986. Descripción de los estados preima-
ginales de escarabeidos asociados a praderas antropo-
génicas de la zona sur de Chile. Tesis Ing. Agr., Valdi-
via. Universidad Austral de Chile, Facultad de Cien-
cias Agrarias, 119 p.
Durán M., L. 1952. Aspectos ecológicos de la biología del
San Juan verde, Hylamorpha elegans (Burm.) y mención
de las demás especies de escarabeidos perjudiciales en
Cautín. Agricultura Técnica (Chile), 12: 24-36.
Durán M., L. 1954. La biología de Phytoloema hermanni
Germ. y mención de otros escarabeidos perjudiciales a
la agricultura en las provincias australes. Revista Chile-
na de Historia Natural, 54: 5-20.
Durán M., L. 1964. La biología de un escarabeido Aus-
tral, el Sericoides germaini D.T. de importancia agrícola
y forestal. Col.: Scarabeidae. Simiente, 34: 31-37.
Hayes W., P. 1929. Morphology, taxonomy and biology
of larval Scarabaeidae. Illinois Biological Mono-
graphs, 12: 1-125.
RITCHER O., P. 1966. White grubs and their allies. A study
of North American Scarabaeoid larvae. Oregon Univ.
Press, Corvallis.
d Ñ dado
IT ia Givln O
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1200
-
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 65-71
EL GENERO TETRAGONEURA WINNERTZ, 1846 EN LA PATAGONIA
(DIPTERA: MYCETOPHILIDAE). NUEVA CLAVE PARA LOS MACHOS
Y DESCRIPCION DE DOS NUEVAS ESPECIES
José P. Durer!
RESUMEN
Se da una clave provisoria para identificar los machos de las cincuenta especies actualmente conocidas
del género Tetragoneura de la Patagonia y se describen dos nuevas especies para Chile: 7 challanenss n.
sp. y T. porteri n. sp.
ABSTRACT
A provisional key to identify the males of the fifty presently known species of Patagonian genus
Tetragoneura is herein given and two new species from Chile: 7. chillanensas m. sp. and 7. porterin. sp. are
described.
INTRODUCCION
Considerando que el número de las especies
del género Tetragoneura halladas en la Patago-
nia llega ahora a cincuenta, se cree útil dar una
nueva clave que facilite la identificación de los
machos. Por su parte las hembras, que suelen
presentar menos caracteres diferenciales, tor-
nan a veces poco segura su determinación,
máxime si conviven varias especies semejantes
en el mismo ambiente. )
Se aclara que al decir “Patagonia” el autor
se refiere al territorio argentino-chileno situa-
do en el extremo Sur del continente america-
no y en este caso, en especial a la zona boscosa
y húmeda, a ambos lados de la cordillera de los
Andes, en que habitan estos dípteros. En la
República Argentina el límite de su dispersión
geográfica hallado hasta ahora se ubicaría en
el Norte de la provincia de Neuquén y en
Chile, gracias a un régimen de lluvias más
abundantes, alcanzaría los 35” de latitud Sur,
incluyendo parte de la región central del país.
Pero es probable que futuros estudios extien-
dan aún más el área habitada por estas espe-
' Adscripto al Museo Argentino de Ciencias Naturales
“Bernardino Rivadavia”, Buenos Aires, Argentina. Domi-
cilio particular: Billinghurst 2559, p. 5, 1425, Buenos Ai-
res, Argentina.
(Recibido: 23 de febrero de 1989. Aceptado: 22 de
agosto de 1989).
cies. En cuanto al límite Sur llega hasta incluir
las islas del archipiélago del Cabo de Hornos.
Antecedentes
La primera clave para este género la dio Free-
man en 1951 para identificar las trece especies
que acababa de describir. La segunda la pre-
paramos en 1976 e incluyó las veintiocho taxa
entonces conocidas. Pero las veintidós espe-
cies nuevas descritas más tarde y un mejor
conocimiento de las anteriores, gracias al nu-
meroso material disponible, permiten ahora
armar una nueva clave más completa. Su úni-
co objetivo es facilitar la identificación de las
especies, por lo que ellas resultan colocadas en
una forma algo artificial. Sin duda futuros
estudios basados también en la biología de las
especies permitirán agruparlas en un orden
más natural y lógico.
Se recuerda que en Tetragoneura son fre-
cuentes las variaciones en la coloración de
ciertas especies. Lo mismo ocurre con algunas
nervaduras alares, incluyendo el aspecto de la
celda radial, cuyas dimensiones influyen tam-
bién en el tamaño de las venas r-m y R¡. Por
ejemplo, se observan ejemplares que normal-
mente tienen esta celda, sin ella o con una
reducción de su tamaño en un ala o en ambas.
Es este un caso frecuente en 7. araucana, galea,
osornoensis, sinuata y tibialas, sin olvidar a indeci-
66 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
sa, cuyas variaciones son las más numerosas.
En esta clave se menciona lo que, por ahora, se
considera normal en cada especie, pero en la
duda siempre serán los genitales los que certl-
fiquen la identificación.
Por razones de espacio es actualmente im-
posible reproducir los dibujos, ya publicados,
de los genitales de cada especie. Por esto y
para facilitar la comprensión de la clave, que
ha sido ampliada al tratar cada especie, se
remite al lector a los trabajos anteriores, cuyos
dibujos le ayudarán a identificar las especies.
Tetragoneura de la Patagonia.
Lista de especies
andina Lane, 1962
araucana Duret, 1976
ardeiceps Freeman, 1951
argentina Duret, 1976
artigasí Duret, 1984
bachmanni Duret, 1976
bejaranor Duret, 1976
bifida Freeman, 1951
cautinensis Duret, 1984
chilena Duret, 1976
chillanensis Mn. sp.
cordillerana Duret, 1982
cornuta Duret, 1982
dentata Freeman, 1951
flavicincta Freeman, 1951
freemani Duret, 1976
galea Freeman, 1951
hepperi Duret, 1976
indecisa Duret, 1976
lanfrancoae Duret, 1984
luispena? Duret, 1982
mallecoensiss Duret, 1984
mapuchensis Duret, 1987 (1985)
matiler Duret, 1982
naumanni Duret, 1976
neopollux Duret, 1987 (1985)
neuquina Duret, 1976
mgripalpiss Freeman, 1951
osornoensis Duret, 1982
paraarderceps Duret, 1980
parachilena Duret, 1982
parapollux Duret, 1987 (1985)
patagonica Duret, 1976
pectinata Freeman, 1951
pena: Duret, 1976
pollux Freeman, 1951
porter: n. sp.
pseudoardeirceps Duret, 1982
pseudochilena Duret, 1982
puyehuensis Duret, 1984
sergio Duret, 1976
simillima Freeman, 1954
(ex sumilis Freeman, 1951)
simplicipes Freeman, 1951
simplicistila Freeman, 1951
sinuata Freeman, 1951
stange: Duret, 1980
stuardo: Duret, 1982
tibialis Freeman, 1951
vianal Duret, 1976
vockerothi Duret, 1982
CLAVE PARA LOS MACHOS
DEL GENERO TETRAGONEURA WINNERTZ, 1846,
DE LA PATAGONIA
ll. Genitales con el dististilo corto, grueso y dividido
en la parte distal en dos lóbulos anchos, uno de
ellos con un reborde muy oscuro; edeago grande,
cónico truncado; falosoma sin filamentos; ante-
nas con los segmentos basales 1 a 111 (e inclusive
IV y V) amarillentos; mesonoto castaño claro y
amarillento, coxas y fémures amarillos .......
Stade CN O AN UD ONCAAETanZ
2 Especie grande, ala de 3,6 mm; celda radial au-
sente; basistilo con el centro del borde esternal sin
setas diferenciadas; genitales Duret, 1976, figs.
13: 4d cortar AA AE chilena.
= Especie menor; celda radial presente; borde es-
ternal del basistilo con setas diferenciadas ... 3
Sd Ala de 3,2 mm; celda radial pequeña, mucho
menor a r-m; centro del borde distal esternal del
basistilo con dos tubérculos, cada uno con dos
10.
Jl;
12 (6)
Duret: Clave para machos y nuevas descripciones de Tetragoneura 67
setas largas y varias menores; genitales Duret,
IO es LS das pseudochilena.
Ala de 2,5-2,8 mm; celda radial grande, igual o
poco menor a r-m; centro del borde distal ester-
nal del basistilo con dos grupos de cuatro setas
largas y gruesas; genitales Duret, 1982, figs. 13-
A o cs poro lero Has parachilena.
Especie normalmente con grandes variaciones
referentes a la celda radial (ausente/presente y
grande o pequeña); ala de 1,8-2,5 mm, tórax y
abdomen oscuros, tallo de la vena Cu ausente y
sin macrotriquias; tibia media sin órgano senso-
rial; genitales Duret, 1976; figs. 20-21 ........
indecisa.
Especies generalmente sin variaciones referentes
a la presencia o ausencia de la celda radial .. 5
Ala con la celda radial presente ............ 6
Aladsintccldal radial nd. A ds 41
Celda radial grande, de tamaño semejante a la
vena r-m (mayor, igual o poco menor)
Celda radial de tamaño nítidamente menor a r-m
TS RAS O EA 12
Tibia media con órgano sensorial muy pequeño y
sin peine apical; especie chica; ala de 1,8 mm,
corta y ancha; tallo de la horquilla anterior ausen-
te y sin macrotriquias; prolongación de la costal
0,7; ala y genitales Duret, 1980, figs. 5-8
stangel.
Tibia media sin órgano sensorial; especie mayor,
ala de 2,5-3 mm, tallo de la horquilla anterior
AECI AS e aaa as on 8
Coxas negras o a predominio oscuro; ala con la
celda anal ensanchada; vena M, con el tercio
basal ausente y sin macrotriquias; balancín oscu-
ro; dististilo bífido desde la base; tergito IX gran-
LA O grupo ardeiceps 9
Coxas amarillas o a franco predominio claro; cel-
da anal normal; dististilo simple .......... 11
Dististilo con dos lóbulos bien separados y de un
PENOSA 10
Dististilo con dos lóbulos unidos y de un tamaño
diferente; genitales Duret, 1982, figs. 9-10 ....
pseudoarderceps.
Lóbulo ventral del dististilo con una cabezuela
nítida; genitales Duret, 1980, figs. 1-2
ardeiceps.
Lóbulo ventral sin cabezuela; Duret, 1980, ala y
genitales figs. 3-4 paraarderceps.
Antena negra; tórax y abdomen negros contras-
tando con las coxas amarillo oscuro; balancín con
tallo claro y cabezuela negra; vena M, con el
tercio basal ausente y sin macrotriquias; dististilo
delgado con el extremo apical semibifurcado; ge-
nitalesDuret 1982 os 19d decile ole bifida.
Antena con base clara; vena M, normal; balanci-
nes amarillos; dististilo cónico, adelgazado en el
ápice; genitales Duret, 1982, figs. 6-7 ........
simplicistila.
Tibia media con órgano sensorial ......... 13
Tibia media sin órgano sensorial .......... 21
(Especie de ubicación dudosa porque al holotipo
le faltan las patas medias: artigasi Duret, 1984,
genitales figs. 9-10).
13.
14.
15%
16.
17:
18.
19 (15)
20.
Zl
2 Ze
23.
24.
(12)
Coxas predominantemente oscuras
Coxas predominantemente claras ......... 15
Tibia media con órgano sensorial oscuro, muy
desarrollado (2/5 de la tibia) engrosando la tibia;
falosoma sin filamentos; genitales Freeman,
1951: fig. 165 tibralis.
Organo sensorial muy pequeño, sin engrosa-
miento tibial; falosoma con largos filamentos; ge-
nitales Duret, 1984, figs. 4-5. lanfrancoae.
Tibia media con órgano sensorial pequeño o insi-
nuado.” era ri ele ll nad ad. 16
Con órgano sensorial grande ............. 19
Alas de 2,5 a 3 mm; vena R, mayor que r-m;
dististilo de ápice oscurecido, simple y aguzado;
genitales Duret, 1982, figs. 16-18 .. osornoensis.
Alas de 2 a 2,3 mm; vena R, nítidamente menor
que r-m;, dististilo con ápice bifurcado ..... 17
Edeago corto y ancho, parecido a un hongo; ter-
gito IX de aspecto normal y ligeramente excava-
do en su borde distal; genitales Duret, 1984,
fis 658) 10 as oy ¿ett cautinensis.
Edeago largo, grueso, cilindroide ......... 18
Edeago curvado hacia el dorso en su parte media,
ápice con dos pequeños alerones claros y extremo
basal con una prolongación con la forma de un
cono delgado y oscuro; tergito IX con su ápice
semejante a una placa plana, grande y oscura,
poco saliente; genitales Duret, 1987 (1985),
figs. 1-3 mapuchensis.
Edeago oscuro, esclerotizado, con una expansión
apical clara en forma de sombrilla; tergito IX de
aspecto normal, color oscuro y borde distal con-
vexo; véase este trabajo, figs. 1-3 .. chillanensis.
Dististilo corto y grueso, ovoide, con una pequeña
punta apical; edeago trapezoidal con una corta
apófisis centro-apical; genitales Duret, 1976,
figs. 24-25 neuquina.
Dististilo ensanchado en la base y con ápice cónico
ROTAR AIM 20
Dististilo con una punta distal delgada y curvada
en forma de garra; edeago claro, poco escleroti-
zado; genitales Freeman, 1951, fig. 166 simillama.
Dististilo más corto, con ápice grueso y poco cur-
vado; edeago con estructuras más esclerotizadas
formando un cono truncado; genitales Duret,
1984, figs. 11-12
Coxas a predominio OSCUTO ..0coocococooo.: 22
Coxas a predominio claro o amarillo; las coxas
media y posterior pueden tener alguna mancha
Oscura A A A Oe 23
mallecoensis.
Balancines oscuros; genitalia con dos filamentos
delgados y muy largos; genitales Duret, 1976,
figs. 5-6 bachmanna.
Balancines claros; filamentos muy cortos, apenas
visibles; genitales Duret, 1976, figs. 17-19
hepper?.
Balancín con cabezuela oscura y tallo claro 24
Balancín totalmente claro ................ 26
Especie delgada, patas claras; dististilo cónico de
Ápice aguzado ler pias» pate ib nl o is 25
Especie robusta, cuerpo castaño negro, algo poli-
68
20:
26 (23)
2
28.
29!
30.
3)
7d
33.
34.
Rev. Chilena Ent. 17, 1989
noso; escutelo con dos setas largas y varias cortas;
fémures amarillos, con bordes y ápices oscuros;
dististilo delgado, largo y sinuoso; genitales Free-
PARED O A Na. sinuata.
Ala de 3,1 a 3,6 mm; celda radial pequeña, corta y
ancha; R, varias veces mayor que r-m; genitalia
clara, poco esclerotizada; edeago con dos apófisis
distales largas, gruesas y con ápice aguzado; geni-
tales Duret, 1982, figs. 19-22 ......... cornula.
Ala de 2,7 mm, celda radial larga y delgada; R,
poco menor que r-m; genitalia parda; edeago
diferente; tergito IX espiculoso en su área distal;
véase este trabajo, figs. 4-5 ........... porter.
Dististilo curvado, de base corta y gruesa y conti-
nuado por un largo cono negro brillante, esclero-
tizado y aguzado en el ápice; tergito IX con un
denso grupo de setas oscuras y cortas colocadas
en su centro; genitales Lane, 1962, fig. 5 y Duret,
¡OS ANECA A andina.
Comtat A cal)
Genitales con filamentos del falosoma largos,
mayoretquerclibasistlo A 28
Genitales con filamentos cortos o ausentes... 29
Filamentos muy largos, delgados, acintados, cur-
vados en su base y doblados en su parte media,
prolongándose a ambos lados del basistilo y ter-
minando en punta; dististilo corto, aplanado, con
ápice romo; tergito IX con espinitas en el borde
distal (Duret, 1982, fig. 8); genitales Duret, 1976,
Hs IA OU AO. vIanal.
Filamentos delgados y paralelos, casi rectos y de
punta aguzada; dististilo con su tercio distal cóni-
co y estrechado; tergito IX con escasas setas del-
gadas; genitales Duret, 1982, figs. 23-25 ......
ld... 30
Genitales sin filamentos .................. 37
Dististilo con dos setas diferenciadas paralelas,
curvadas en su parte distal y de un largo semejan-
tejo mayomnalidististilor a pos: 31
Dististilo con dos setas diferenciadas algo meno-
A A a io o 30)
Dististilo simple, corto y grueso, ligeramente cur-
vado, con dos setas subapicales gruesas y más
largas que el dististilo; tegumento con setas cortas
y finas; cara externa con varios dientes gruesos
colocados en el área distal; genitales Freeman,
1951 Mg 160 lados 2 S8s Ed: dentata.
Dististilo dicen 32
Dististilo acodado (en vista lateral) ........ 33
Dististilomoracodado 36
Dististilo doblado en ángulo recto; la parte basal,
corta y gruesa, tiene en su cara interna una hilera
de setas cortas y rectas y en su ápice redondeado
se insertan dos setas largas y curvadas en el me-
dio; la parte distal es más larga, en forma de
visera, adelgazándose hacia el ápice; resto del
tegumento con setas escasas, cortas y finas; genl-
tales Frecma OIR A galea.
Dististilorditerente A 34
Dististilo, en vista dorsal, con forma de hocico
corto, grueso y con superficie rugosa; su cara
35 (30)
36 (32)
37 (29)
38.
39.
40.
interna es cónica, con un grupo de pelos finos en
la base; el extremo superior es redondeado y con
setas delgadas, además tiene dos setas subapicales
paralelas, largas y curvadas; borde interno
espiculoso; coxas I1 y II oscurecidas en la base;
genitales Duret, 1976, figs. 1-2 ...... araucana.
Dististilo grande, más o menos acodado en L in-
vertida; parte basal corta, gruesa y cilindroide,
borde interno con dos o más setas cortas y parale-
las; parte distal más larga y rugosa en su cara
externa; genitales Duret, 1976, figs. 31-32 sergio1,
Ala de 2,5 a 3,3 mm, genitales amarillentos; dis-
tistilo corto, ancho, de superficie rugosa y espicu-
losa; parte basal gruesa, con dos o más setas para-
lelas; parte distal con dos apófisis oscuras en su
ángulo superior y dos setas subapicales gruesas;
genitales Duret, 1976, figs. 7-10 ..... bejaranol.
Ala de 3,5 a 4 mm; genitales pardo-claros; dististi-
lo de base corta, delgada y cilindroide, el resto
ensanchado y algo cóncavo, con una apófisis pe-
queña dorsal, dos setas cortas distales, varias setas
subapicales internas y numerosas setas finas en la
cara externa; genitales Freeman, 1951, fig. 158 y
Duxet OO Rtgs ML e flavicincta.
Genitales pardo-claro. Dististilo corto y ancho,
con un breve apéndice digitiforme en el ápice y
dos setas finas subapicales; edeago con un peque-
ño cuerpo cónico apical muy oscuro y nítido;
genitales Duret, 1976, figs. 27-28 ... patagonca.
Genitales pardos. Dististilo ovalado, de base corta
y delgada; cara interna con dos setas subapicales y
numerosos pelos cortos dispersos; el extremo dis-
tal es claro y el ápice presenta una pequeña cavi-
dad tapizada con pelitos finos; edeago simple,
con elementos claros; genitales Duret, 1982, figs.
A O aa Decio ee cordillerana.
Genitales claros, amarillentos; dististilo con dos
cortas puntas apicales que limitan una pequeña
concavidad de bordes oscuros; edeago pequeño,
delgado, poco esclerotizado; genitales Duret,
1976, figs. 29-30
Genitales oscuros, bien esclerotizados
Dististilo corto, con un nítido peine negro en el
ápice; tergito IX con una mancha central pardo
oscura; genitales Duret, 1982, figs. 26-27 .....
vockerotht.
Dististilo y tergito IX diferentes .............
grupo pollux 39
Edeago de base ancha, cónica y ápice en forma de
hongo; genitales Duret, 1987 (1985), figs. 4-5
e SA e parapollux.
Edeago más o menos ovoide, grueso y oscuro..
A A e 40
Antena con el primer segmento del flagelo largo,
el doble de su ancho; tallo de la horquilla anterior
presente, con macrotriquias; base de la horquilla
posterior debajo de Rs; edeago ovoide, con su-
perficie lisa; genitales Freeman, 1951, fig. 164
A a pollux.
Primer segmento del flagelo antenal corto, tan
largo como ancho; tallo de la horquilla anterior
ausente y con escasas macrotriquias; base de la
horquilla posterior basal a Rs; edeago redondea-
Duret: Clave para machos y nuevas descripciones de Tetragoneura 69
do en la mitad distal y con superficie escamosa,
estrechado en la parte media y ensanchado en la
base; genitales Duret, 1987 (1985), figs. 6-8...
00 E 2 neopollux.
41 (5) Tibia media del macho con órgano sensorial ..
ES co ST 42
27 Tibia posterior sin peine apical ........... 43
== Tibia posterior con peine apical .......... 44
43. Palpos, coxas y balancines a predominio oscuro;
dististilo adelgazado en su mitad distal; genitales
Freeman lO EOS. To nigripalpis.
= Palpos, coxas y balancines a predominio claro;
dististilo ancho; genitales Duret, 1984, figs. 13-14
o LL E AE): het e puyehuensis.
44. Dististilo con dos partes bien diferenciadas, la
mitad basal es gruesa y tiene en la cara externa
varias setas gruesas, la mitad distal es delgada,
curvada y oscura; filamentos largos y simples,
desprendiendo cerca del ápice una ramita corta,
finamente pectinada y poco visible (Duret, 1982,
fig. 5); genitales Freeman, 1951, fig. 169....
a lo e ln lla oo pectinata.
= Dististilo diferente; filamentos muy largos y cur-
vados en su porción distal ................ 45
ALS Edeago grande, cilindroide; filamentos muy del-
gados, poco recurvados y con escasos pelillos sub-
apicales; genitales Duret, 1982, figs. 30-31 ...
do o A AA stuardo!.
—. Edeago de tamaño menor, ovoide; filamentos
muy largos, recurvados en el tercio distal, luego
ensanchados y desprendiendo numerosos peli-
llos finos y rectos; genitales Duret, 1976, figs. 3-4
(holotipo de Argentina) y Duret, 1982, fig. 2 (ma-
chodeCOhlevari o O argentina.
46 (41) Tergitos con nítidas manchas claras basolatera-
les; antenas con los tres segmentos basales
amarillos EM TARADO EP 47
= MergitoshoscurosA Pd or A 48
47. Especie grande, ala de 4,1 mm, dististilo corto,
ancho, con un pequeño diente dorsal y el ápice
cónico; edeago con un punto negro apical; geni-
tales Duret, 1976, figs. 15-16 y 1982, fig. 34 (dis-
astilo LP o A freeman:.
= Especie menor, ala de 2,6 a 2,8 mm, dististilo más
delgado, algo curvado y ápice en forma de hoci-
co; edeago sin punto negro apical y con dos lámi-
nas estriadas laterales; genitales Duret, 1982,
Ss e e so SO ls luispena:.
48. Ala con el tallo de la horquilla anterior muy ate-
nuado y sin macrotriquias; dististilo corto y an-
cho, en la base con un delgado bastón oscuro
erecto y ápice cónico oscuro y redondeado, segui-
do por un peine con varios dientes delgados y
negros; genitales Duret, 1976, figs. 22-23 ...
o o SIA CONS Ha lolo 06 naumanni.
= Ala con venas normales y con macrotriquias; dis-
tistilo mayor, ondulado, con una pequeña punta
apical delgada y oscura; genitales Freeman, 1951,
MR card simplicipes.
DESCRIPCION DE NUEVAS ESPECIES
Tetragoneura chillanensis sp.n.
(Figs. 1-3)
Color general negro con patas amarillentas;
tibia media con un órgano sensorial; celda
radial presente.
Macho. Longitud del ala 2 a 2,2 mm.
Cabeza. Clípeo castaño oscuro, palpos ama-
rillentos; occipucio negro Opaco, setas escasas
con reflejos dorados. Antena negra, pedicelo
con ápice claro; segmentos basales del flagelo
con un largo de aproximadamente una vez y
media su ancho; los restantes más cortos; pu-
bescencia plateada.
Tórax. Mesonoto negro, opaco, uniforme,
con escasas setas cortas doradas y setas largas
oscuras. Escutelo y postnoto negros. Pleura e
hipopleura pardo negras.
Patas amarillentas; coxa posterior con pe-
queña mancha oscura basal; trocánteres oscu-
recidos en el ápice; fémures con el borde ven-
tral oscurecido en la base; fémur posterior con
una mancha oscura en su cuarto distal. Tibia
media con un órgano sensorial oscuro que
mide desde 1/4 a 1/6 de su longitud; tibias II y
II sin peine distal; setas tibiales cortas. Tibia
media con 4 setas anteriores pequeñas y 2 a 3
dorsales; tibia posterior con setas cortas e
iguales, 7 a 8 anteriores y 12 a 15 dorsales.
Ala clara; prolongación de la vena costal
0,7; celda radial pequeña, mide cerca de 0,25 a
0,30 de r-m; vena R; corta, alcanza a la mitad
de r-m; tallo de la horquilla anterior ausente,
pero señalado por macrotriquias; venas M| y
Ma algo atenuadas, pero con numerosas ma-
crotriquias; horquilla Cu con su base casi a
nivel del ápice de r-m y un poco basal a la base
de la horquilla anterior; vena Cu adelgazada,
pero con abundantes macrotriquias. Balancín
con tallo algo oscurecido y cabezuela amari-
llenta.
Abdomen castaño negro, con pilosidad do-
rada.
Genitalia (Figs. 1 a 3), esclerotizada, oscura.
Material estudiado: 3 machos de Chile,
prov. de Chillán; holotipo N? 17066 y parati-
70 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Figuras 1-5. Tetragoneura chillanensis sp.n.: 1. Genitalia, vista dorsal (tergito IX retirado); 2. Dististilo, vista ventral
(otro ejemplar); 3. Tergito IX (sin los cercos). T. porteri sp.n.: 4. Genitalia; 5. Tergito IX y cercos, vista dorsal. Todas
las figuras con el mismo aumento.
po N” 17069, ambos de Shangri-la, X11-1983 está próxima a T. mapuchensiss Duret, 1987
y paratipo N* 17099 de Las Trancas, II- (1985), pero de ésta se aparta porque la sp.n.
1984, todos L. Peña leg. presenta un edeago cuyo ápice tiene una
Discusión: Tetragoneura chillanensis sp.n. expansión clara en forma de sombrilla, y el
Duret: Clave para machos y nuevas descripciones de Tetragoneura 71
tergito IX de aspecto normal y con el borde
distal convexo.
Tetragoneura porter: Sp.n.
(Figs. 4-5)
Color de tórax y abdomen pardo oscuro, patas
amarillas, tibia media sin órgano sensorial, cel-
da radial presente.
Macho. Longitud del ala 2,7 mm.
Cabeza. Clípeo pardo negro, con setas co-
brizas; partes bucales y palpos pardos; occipu-
cio negro. Antena con escapo y pedicelo ama-
rillo anaranjados; flagelo con los segmentos
cortos (tan largos como anchos), los dos basa-
les pardo amarillentos, oscureciéndose los si-
guientes, con pubescencia plateada.
Tórax. Mesonoto pardo, tegumento algo
brillante, con tres bandas centrales oscuras
apenas insinuadas; hombros con un área clara
amarillenta difusa, la que se extiende adelga-
zada por los bordes laterales; setas cortas ne-
gras escasas, con reflejos cobrizos y setas largas
negras. Escutelo pardo oscuro con dos setas
centrales largas y dos laterales menores. Post-
noto pardo claro. Pleuras pardo oscuro, ester-
nopleura pardo amarillenta en su mitad infe-
rior; hipopleura parda clara.
"Patas amarillentas con suave tinte castaño,
sin manchas nítidas; trocánteres amarillentos
con borde distal castaño oscuro. Tibia media
sin Órgano sensorial. Setas tibiales cortas; tibia
media con 2 setas anteriores, 2 dorsales y 2
posteriores distales; tibia posterior con 6 ante-
riores, 5 dorsales y 2 posteriores. Tibias II y
II sin peine distal. |
Ala con débil tinte pardo claro; prolonga-
ción de la vena costal 0,6; subcostal corta; cel-
da radial larga y delgada, mide aproximada-
mente 0,7 de r-m; vena R, poco menor que
r-m; tallo de la horquilla anterior muy atenua-
do, pero con 5-6 macrotriquias en su mitad
distal; M, y Moa con la base atenuada; base de la
horquilla Cu poco distal a la base de r-m y del
tercio basal del tallo de la horquilla anterior.
Balancines con tallo amarillento y cabezuela
parda.
Abdomen pardo oscuro, setas con reflejos
claros.
Genitalia (Figs. 4-5) bien esclerotizada, os-
cura. Tergito IX con una área finamente es-
piculosa en su parte distal.
Material estudiado: el macho holotipo
N? 16622 de Chile, prov. de Osorno, Pu-
yehue, Aguas Calientes, XII-1983 (Luis E. Pe-
ña col.). El nombre de esta especie recuerda a
un gran naturalista chileno el Prof. Dr. Carlos
E. Porter, fundador-director de la Revista
Chilena de Historia Natural.
Discusión: 7. porter: sp.n. por sus caracte-
res generales está próxima a T. cornuta Duret,
1982, separándose de ella por su tamaño me-
nor, celda radial larga y delgada, R¡ poco me-
nor a r-m y genitalia oscura, con edeago bien
diferente y tergito IX espiculoso en su área
distal.
LITERATURA CITADA
Durer, J.P. 1976. Nuevas especies del género Tetragoneu-
ra Winnertz, 1846, de la Patagonia. Rev. Soc. Ent.
Arg., 35(1-4): 155-173.
Durer, J.P. 1980. Notas sobre el género Tetragoneura
Winnertz, 1846. Acta Zool. Lilloana, 36(1): 103-119.
Durer, J.P. 1982. Nuevas notas sobre el género Tetrago-
neura Winnertz, 1846, en Chile. Physis (Buenos Aires),
Secc. C. 40(99): 81-92.
Durer, J.P. 1984. Adiciones a los géneros Austrosynapha
Tonnoir, 1929 y Tetragoneura Winnertz, 1846, de Chi-
le. Bol. Soc. Biol. Concepción, Chile, 55: 37-46.
Durer, J.P. 1987 (1985). Tres especies nuevas del género
Tetragoneura Winnertz, 1846, de Chile. Rev. Soc. Ent.
Arg., 44(3-4): 385-390.
FREEMAN, P. 1951. Diptera of Patagonia and South Chile.
Part 111: Mycetophilidae. British Museum, London,
138 pp.
FREEMAN, P. 1954. Los insectos de las Islas Juan Fernán-
dez. 13. Mycetophilidae. Rev. Chilena Ent., 3: 23-40
(1953).
Lane, J. 1962. Mycetophilidae from Chile. Studia Entom.,
Rio de Janeiro, 5: 527-548.
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Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 73-77
LOS TIPOS DE COELIOXYS (HYMENOPTERA: MEGACHILIDAE)
DESCRITOS POR E.L. HOLMBERG
MANFREDO Frrrz' y HaroLDO Toro
2
RESUMEN
En el presente trabajo se estudian los tipos de Coelioxys descritos por Holmberg. El material considera-
do se encuentra depositado en el Museo Argentino de Ciencias Naturales y en el Zoologische
Sammlung des bayerischen Staates. En el Museo Argentino de Ciencias Naturales se encontraron 24
holotipos en muy pobres condiciones; se designaron 10 lectotipos y se estima como destruidos 20
ejemplares, posiblemente tipos.
ABSTRACT
The type specimens of Coelioxys, described by Holmberg, are studied in this paper. The material
considered is deposited in the Museo Argentino de Ciencias Naturales and in the Zoologische
Sammlung des bayerischen Staates. In the Museo Argentino 24 holotypes in regular or poor
conditions were found, 10 lectotypes were designed and 20 specimens (possible types) were found
destroyed.
INTRODUCCION
Los trabajos de Moure (1951) y Mitchell
(1973), han significado un importante adelan-
to en el conocimiento de Coelioxys en los últi-
mos años, haciéndose notar la conveniencia de
realizar un estudio de los tipos de Holmberg,
que extrañamente nunca antes fueron reexa-
minados.
Entre 1885 y 1918, o sea durante 33 años,
E.L. Holmberg describió 83 especies y dos
subespecies de abejas de este género, cuyos
tipos, en su gran mayoría, quedaron deposita-
dos en su colección personal.
La Colección Holmberg sufrió un largo pe-
ríodo de abandono después del fallecimiento
de su dueño y fue depositada finalmente en
Buenos Aires, en el Museo Argentino de Cien-
cias Naturales Bernardino Rivadavia.
El daño sufrido en muchos grupos es irre-
parable (Fritz, 1968) y las Coelioxys no esca-
"CONICET - Instituto de Investigaciones Entomológicas
de Salta, Casilla de Correo 3, 4405 Rosario de Lerma -
Salta, Argentina.
“Departamento de Zoología, Universidad Católica de
Valparaíso, Casilla 4059, Valparaíso - Chile.
(Recibido: 12 de abril de 1989. Aceptado: 22 de agosto
de 1989).
pan a este desastre. El trabajo de localizar los
tipos ha sido arduo; muchos no se encuentran,
pero es posible que algunos de los que faltan
todavía puedan aparecer, independientemen-
te de su estado de conservación.
Para mayor dificultad, muchos rótulos o
bien son incompletos, no concordando con los
datos de la descripción, o bien han sido remo-
vidos, suponemos que por el propio autor de
las especies.
Una pequeña parte del material trabajado
por Holmberg, se ha conservado en excelente
estado en la Colección estatal de Múnchen y
está siendo estudiada por el Dr. M. Schwartz;
estos ejemplares corresponden a las coleccio-
nes hechas por Hubrich, cuando vivió en Ar-
gentina, antes de la segunda guerra mundial.
Holmberg devolvió personalmente este mate-
rial a Hubrich, incluyendo los tipos de las si-
guientes especies: bicingulata, blabera, hickena,
hubrichiana, quarens, remissa y rosarina.
Sin excepciones, todos los ejemplares, que
se han considerado como “Tipo”, llevan el
rótulo manuscrito de Holmberg y datos de
localidad, fecha o colector, de acuerdo a lo
indicado en la publicación. En algunos casos,
aunque la letra de Holmberg sugiere que se
trata de un tipo, hemos optado por conside-
74
Rev. Chilena Ent. 17, 1989
rarlo como “no ubicado”, por carecer de in for-
mación adicional a la identificación.
En la lista se indica, en primer término, el
material tal como fue detallado en la descrip-
ción original, agregándose a continuación los
datos de los especímenes encontrados en la
Colección del Museo Argentino de Ciencias
Naturales (MACN). La Colección del Zoolo-
gische Sammlung des bayerischen Staates, de
Muúnchen, será anotada con la sigla (ZSBS).
LISTA DE
LOS TIPOS DE HOLMBERG
. abnormis 1887: 71. Paraguay: Asunción, 4.
1885. 2. No ubicado.
. alacris 1888: 122. Argentina: Chaco, For-
mosa. 4. 1885. 3. No ubicado.
. ambrosetti 1918: 3. Argentina, Catamarca,
El Candado, 111.12.1917. 9, Joergensen.
Holotipo, sólo tórax y alas; con dos etique-
tas: Catamarca y determinación (MACN).
. angustivalva 1888: 130. Argentina: Bue-
nos Aires, Las Conchas, 2. 1879. 9. No
ubicado.
. Aspaste 1916: 562. Argentina: La Rioja,
Giacomelli, d y 2. Restos del tórax. Dos
etiquetas: La Rioja y determinación con
indicación de Y (MACN).
. australis 1886: 148. Argentina, Buenos Al-
res, Tandil, 1.29.83. Y. Holotipo en bue-
nas condiciones, con dos etiquetas: trian-
gular de fecha y determinación (MACN).
. bicingulata 1918: 156. Argentina: Santa
EN EAS dl cia
(ZSBS).
. blabera 1916: 590. Argentina: Santa Fe,
Alberdi, Húbrich. d. (ZSBS).
. bonaerensis 1887: 31. Argentina: Buenos
Aires, Alrededores Capital. gd. 12.1879.
No ubicado.
. bonplandiana 1918: 10. Argentina: Misio-
nes, Colonia Bonpland, X.18.1909, Joer-
gensen. Y. Holotipo en buenas condicio-
nes, con dos etiquetas: fecha e identifica-
ción (MACN).
. cameghinor 1903: 448. Argentina: Santa
Cruz. 2. Holotipo, en buenas condicio-
nes, con dos etiquetas: Santa Cruz y deter-
minación (MACN).
. cerastopleura 1903: 442. Argentina: Chaco,
Bermejo, X11.4.88, Colonia Azara 111.10 y
14.
15.
16.
198
20.
Zol
Z ze
23.
20.89, d, Tucumán N* 4174.42 y, 14
s/n”; 1 2 Tucumán; 1 $ Colonia Azara,
111.28.89; 1 gd S. Bermejo, XI1.4.88. Bo-
man. Lectotipo (presente designación). 1
2 con dos etiquetas: Col. Azara, 111.20.89
y determinación/ (MACN).
. cerasiopleura schrottkyana 1916: 554. $ sin
procedencia, en buenas condiciones. Ho-
lotipo con etiqueta de determinación
(MACN).
chacoensis 1903: 451. Argentina. Chaco.
Puerto Bermejo, XI1.16.1888. 3. Boman.
Holotipo, sin abdomen, dos etiquetas: Río
Bermejo, XI1.16.1888, Boman y determi-
nación (MACN).
chola 1916: 566. Argentina: Jujuy in urbe,
XI1.5.1903. $. Holotipo, restan sólo el tó-
rax y las alas. Dos etiquetas: Jujuy C.
XI1.5.1903 y determinación (MACN).
coloboptiche 1887: 68. Argentina: Entre
Ríos. Paraná; Santa Fe: Rosario III. 16.
1985; Uruguay: Carmelo, 8 g y 9 Y. Lec-
totipo ? (presente designación), falta ca-
beza y parte del tórax; 3 etiquetas: Paraná
Mrz.; N? 132 y determinación (MACN).
. cordillerana 1909: 139. Argentina: Mendo-
za, 31.X.1906 3.1 Y XI1.12.1905; Cha=
cras de Coria V.30.1908, Joergensen. Hay
restos de dos ejemplares de la serie
(MACN).
. corduvensis 1887: 77,1 2 y 1 Sd, Argentina:
Córdoba, A. Doering, 11.1880. No ubi-
cado.
correntina 1887: 75. Argentina: Corrien-
tes, Paso de Garruchos, Y. Hay sólo restos
del holotipo. Dos etiquetas: Corrientes y
determinación (MACN).
deletangi 1916: 589. Argentina, Tucumán,
Alpachiri, XII.6.1916. 9. Sólo restos del
holotipo. Dos etiquetas: Alpachiri y deter-
minación (MACN).
dinellii 1916: 586. Argentina, Tucumán.
3. Tipo destruido, en el alfiler quedan
sólo las etiquetas (MACN).
diversidentata 1916: 573. Argentina, Men- |
doza, Joergensen. d. Alfiler con etiqueta
de determinación y un pequeño rótulo
rectangular rojo. Tipo destruido
(MACN).
doellor 1916: 588. Argentina: Tucumán,
Alpachiri, X11.6.1916, 4. Holotipo en
Fritz y Toro: Tipos de especies de Coelioxys descritas por Holmberg 75
24.
20:
26.
2
28.
2)
buenas condiciones con dos rótulos: Alpa-
chiri y determinación (MACN).
doeringi 1916: 540. Argentina: Córdoba,
Capilla del Monte, Doering, 11.1904. 3.
Hay un alfiler con etiqueta de identifica-
ción solamente. Tipo probablemente des-
truido.
domestica 1918: 154. Argentina. Misiones,
Bonpland, X.18.1909. g. Joergensen. Ti-
po destruido (MACN).
elata 1916: 578. Argentina, Mendoza,
Joergensen. 3. Hay un alfiler con restos
de un ejemplar y etiqueta de identifica-
ción (MACN).
epaenete 1916: 568. Argentina, Mendoza,
Joergensen. £. No ubicado.
epistene 1916: 581. Argentina, Mendoza,
in Cordillera, 12.X11.1907. Joergensen.
d. Tipo destruido (MACN).
exspectata 1918: 5. Argentina: La Rioja,
Giacomelli, 2. Holotipo sin cabeza, dos
etiquetas: Roja, Giacomelli y, determina-
ción (MACN).
30. fontanae 1909: 89. Argentina: San Juan,
31
32.
33
34.
35.
36.
X11.1907. 2, queda sólo el tórax y las alas.
2 etiquetas: San Juan, L.J.F. y determina-
ción, Holotipo (MACN).
.'frieseana 1916: 576. Argentina: Mendoza,
Coria, Joergensen. d. Holotipo, quedan
sólo tórax y alas. Dos etiquetas: 5.V.08.
Coria y determinación (MACN).
frigens 1916: 582. Argentina: Mendoza,
Joergensen. gd. Holotipo, queda sólo tó-
rax y alas, dos etiquetas, una con N” 5 y
línea roja y otra con determinación
(MACN).
gallardoi 1916: 554. Argentina: Corrien-
tes. . Holotipo, falta abdomen, dos rótu-
los: Corrientes y determinación (MACN).
giacomelli 1916: 570. Argentina: La Rioja,
Giacomelli. 84 y 9%; 1 Y Mendoza,
Reed. Hay 5 9 9 y un 3, uno de ellos sólo
el tórax. Lectotipo (presente designación),
con dos rótulos, uno circular “Saa” y otro
de determinación. El ejemplar muestra
señas evidentes de haber sido sumergido
en un líquido (MACN).
hickent 1918: 148. Argentina: Santa Fe, $.
Holotipo (ZSBS).
huarpum 1916: 584. Argentina: Mendoza,
Joergensen, d. Holotipo, quedan sólo tó-
HT
38.
SN
40.
Lale
42
43.
44.
45.
46.
47.
48.
49.
rax y alas y rótulo de determinación
(MACN).
hubrichi 1916: 571. Argentina: Santa Fe,
Alberdi, Húbrich, 4. No ubicado.
hubrichiana 1918: 157. Argentina: Santa
Fe. Rosario, Húbrich, d y Y (ZSBS).
humahuakae 1909: 67. Argentina: Jujuy,
XI1.5.1903, 2. Holotipo en buenas condi-
ciones. Dos etiquetas: Jujuy, XI1.5.1903 y
determinación (MACN).
humahuakae oblita 1918: 2. Argentina: Sal-
ta, Pampa Grande, Quebrada de la Pedre-
ra, XI.20.1908, 2. Holotipo, restos del tó-
rax, dos etiquetas: localidad y fecha y, de
determinación (MACN).
inconspicua 1885: 206. Uruguay, Argenti-
na: B. Aires, Belgrano, X11.1879. Y. Hay
dos hembras sin datos (MACN).
insolita 1903: 450. Argentina: Chaco, For-
mosa, 111.1885 g. Vestigios del ejemplar
tipo. Dos rótulos: Formosa, 111.85 y deter-
minación (MACN).
Joergenseni 1909: 72. Argentina: Mendoza,
o A Ios A
27.1908. No ubicado.
joergensentana 1916: 580. Argentina: Men-
doza, Joergensen. d. Holotipo, queda só-
lo tórax y alas. Dos etiquetas: N* 12 de
Joergensen y determinación (MACN).
joergenseniella 1918: 9. Argentina: Misio-
nes, Bompland, 11.8.1910. Joergensen. 2)
Holotipo en buenas condiciones con tres
rótulos: 11.8.1910. Colonia Bompland y
determinación (MACN).
jujuyensis 1909: 88. Argentina: Jujuy,
XI1.5.1903. 2. Un ejemplar muy destrui-
do. El otro en buenas condiciones. Lectoti-
po (presente designación), Jujuy. C.
XI1.5.1903, y determinación (MACN).
lativalva 1903: 446. Argentina: Chaco,
Puerto Bermejo, Formosa, XI1.12.1888.
2. Quedan sólo tórax y alas (MACN).
laudabilis 1889: 120. Argentina: B. Aires,
Capital, Palermo, d. Holotipo en buenas
condiciones (MACN).
liberalis 1917: 575. Argentina: Córdoba,
11.1880. d, Sin cabeza y sin procedencia,
con dos etiquetas: tipo y determinación.
Descrito como macho de C. corduvensis
1887: 77 (MACN).
. litoralis 1888: 124. Argentina: Buenos Al-
res, Delta Paraná, Isla de Antequera,
76
54
52%
59%
54.
551
56.
e
58.
9%
60.
61.
62.
63
64.
65:
Rev. Chilena Ent. 17, 1989
111.1874. Un único ejemplar muy destrui-
do, Anteq. (MACN).
lynchi 1903: 445. Argentina: Buenos Ai-
res, Baradero. d. No ubicado.
macaria 1916: 555. Argentina: La Rioja,
C.S. Reed. $. No ubicado.
magistralis 1918: 158. Argentina: Misio-
nes, Bonpland, 1.13.1911, Joergensen. d.
Quedan restos del tórax. 2 rótulos; Bon-
pland 13.1.1911, Joergensen y determina-
ción (MACN).
mendozina 1903: 450. Argentina: Mendo-
za, San Rafael, Autran. 2. Holotipo, en
buenas condiciones. 2 etiquetas: San Ra-
fael, Mendoza, 111.1903 y determinación
(MACN).
mesopotamica 1918: 163. Argentina: Misio-
nes, X.11.09, Joergensen. d. No ubicado.
mimetica 1916: 562. Argentina: Mendoza,
C.S. Reed. ?. Tipo destruido. Quedan só-
lo los rótulos (MACN).
missionum 1888: 126. Argentina: Misiones,
Alto Paraná. 2. No ubicado.
mutans 1916: 567. Argentina: Mendoza,
Joergensen. 2. Holotipo, falta cabeza y
mitad del tórax. 3 etiquetas: Nr. 11 de
Joergensen con línea roja, rectángulo rojo
y determinación (MACN).
occidentalis 1916: 566. Argentina: Mendo-
za, Joergensen. Y. No ubicado.
pampeana 1887: 72. Argentina: Las Con-
chas, Arrecifes, Baradero, Mercedes, La
Plata, Flores. 8 d y £ 9. g. Lectotipo (pre-
sente designación), en buenas condicio-
nes, 2 etiquetas: Flores, 1.21.1883 y deter-
minación (MACN).
patiens 1916: 574. Argentina: Mendoza,
C.S. Reed. g. Holotipo, quedan vestigios
del tórax y las alas. 2 etiquetas: Mendoza,
C.S. Reed y determinación (MACN).
pedregalensis 1916: 583. Argentina: Men-
doza, Pedregal, X1.17.1906, Joergensen,
3. Holotipo en buenas condiciones; dos
etiquetas Pedregal, XI.17.1906 y determi-
nación (MACN).
pirata 1885: 208. Uruguay: Colonia.d.
Gabinete de Zoología de la Universidad
de Buenos Aires. No ubicado.
proxima 1916: 579. Argentina: Buenos Ai-
res, 3. No ubicado.
pruna 1916: 564. Argentina: Mendoza,
Joergensen. d 2. Lectotipo d (presente
66.
67.
68.
69.
70.
o
qe
73.
74.
75.
76.
Tie
designación). 3 etiquetas: Nr. 2 de Joer-
gensen; rótulo rojo de tipo y determina-
ción (MACN).
pucaraensis 1916: 577. Argentina: La
Rioja, Giacomelli, 9. No ubicado.
quaerens 1903: 454. Argentina: Chaco
Australis, Colonia Azara, 111.21.89, E. Bo-
man. Holotipo gd (ZSBS).
reediana 1916: 555. Argentina: Tucumán,
in urbe: X1.23.1916,C.S. Reed. d. l ejem-
plar sin cabeza, probable tipo, con etique-
ta de determinación solamente.
remissa 1888: 131. Argentina, Buenos Ai-
res, Ciudad, XI1.74; Chaco, Formosa,
IV.85. $. No ubicado.
rhadia 1916: 569. Argentina: Jujuy, Río
Chico, prop. urbem. Mendoza, San Juan,
Rioja. Hay 15 ejemplares. 3 gd y £ 9.2San
Juan totalmente destruidos. 1 Mendoza
destruido. 3 Mendoza sólo el tórax. 3
Mendoza sin cabeza. 2 Mendoza sin abdo-
men. 3 2 Mendoza en buenas condicio-
nes. 1 de Jujuy sólo el tórax. Lectotipo
(presente designación) Y sin ojos ni ante-
nas. 2 etiquetas: C.S. Reed, Mendoza y
determinación (MACN).
riojana 1916: 554. Argentina: La Rioja,
Giacomelli $. No ubicado.
rosarma 1918: 150, 158. Argentina: Rosa-
rio, Santa Fe, Leanes 111.3.1916, Húbrich
gd Y (ZSBS).
sanjuanina 1916: 574. Nomen nudum. No
da descripción.
schulzz 1909: 60. Argentina: Córdoba, F.
Schulz. Cordillera de Mendoza. dg y ?.
Lectotipo Y. (Presente designación), en
regular condición, con 2 etiquetas: Córdo-
va, F. Schulz y determinación (MACN).
sostas 1918: 7. Argentina: Misiones, Colo-
nia Bonpland, 1.21.1911,1.10.1911, Joer-
gensen. Lectotipo Y. (Presente designa-
ción) (MACN). En buenas condiciones. 2
etiquetas: Misiones, Colonia Bonpland,
I.10.1911. Joergensen y determinación.
subhamata 1916: 559. No indica proceden-
cia. 2. No ubicado.
subtropicalis 1887: 67. Argentina: Misio-
nes, Santa Ana, 24.11.1886. ?. Holotipo,
en buenas condiciones, 2 etiquetas, Misio-
nes, Santa Ana, 11.24.1886 y determina-
ción. |
Fritz y Toro: Tipos de especies de Coelioxys descritas por Holmberg 7
78. tarda 1916: 583. Argentina: Mendoza,
Joergensen. 3 y Y. No ubicado.
79. tehuelche 1916: 565. Argentina: Patagonia,
San Jorge Y. Holotipo en buenas condi-
ciones. 2 etiquetas: localidad y determina-
ción (MACN).
80. tenacior 1916: 576. gd tenax olim! Argenti-
na: Buenos Aires, Arrecifes, X11.83. Hay
1 solo ejemplar destruido, que parecer ser
el tipo (MACN).
81. tenax 1888: 118. Argentina: Prov. Buenos
Aires, Belgrano, 11.81; Mercedes, 1.79.
2 2. No ubicado.
5296: 5006. Jujuy 1 urbe
13.X1I1.1903 y Tilcara. Lectotipo d. (Pre-
sente designación), muy destruido, 2 eti-
quetas: Jujuy 13.X11.1903 y determina-
ción (MACN).
83. tucumana 1903: 449. Argentina: Tucu-
mán, Nr. 4174. 2. No ubicado.
84. vaniegata 1916: 575. Argentina: Misiones.
3. Holotipo en buenas condiciones, 3 eti-
quetas: Nr. 7597, Misiones y determina-
ción (MACN).
85. vituperabilis 1903: 453. Argentina: Chaco
*Australis, Colonia Azara, 1V.17.89. Bo-
man. d. Sólo se conservan los rótulos
_(MACN).
AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecen muy sinceramente la
colaboración de las siguientes personas, que
de alguna u otra forma nos apoyaron, dándo-
nos información o acceso a las colecciones a su
cargo: Dres. A. Bachmann y J.F. Genise (Mu-
seo Argentino de Ciencias Naturales “Bernar-
dino Rivadavia”), Dr. T. Griswold (Bee Biolo-
gy € Systematics Lab. Utah State University) y
Prof. Dr. Maximilian Schwarz, Austria (Zoolo-
gische Sammlung des bayerischen Staates).
LITERATURA CITADA
Frrrz, M.A. 1968. Los tipos de Cercerini (Hym. Spheci-
dae) en la colección del Museo Argentino de Ciencias
Naturales “Bernadino Rivadavia”. Anls. Mus. Hist.
Nat. Valparaíso, 1: 161-171.
HormbBERG, E.L. 1885. Algunos Himenópteros de la Re-
pública Oriental del Uruguay. Anls. Soc. Cient. Arg.,
pp. 206-208.
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Córdoba, 5: 137-150.
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Argentina - Coelioxys. Anls. Soc. Cient. Arg., pp. 27-33;
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HoLmBERG, E.L. 1888. Sobre Apidos nómadas de la Rep.
Argentina - Coehoxys Anls. Soc. Cient. Arg., pp. 118-
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HoLMBERG, E.L. 1909. Nomadinae novae Argentinae, ge-
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Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 79-83
DESCRIPCION DE LA LARVA Y PUPA DE CYCLODERUS SIGNATICOLLIS F. ET G.
(COLEOPTERA: PYTHIDAE)
DoucLas Jackson S.'
RESUMEN
Se describe la larva y pupa de Cycloderus signaticollis F. et G. (Coleoptera: Pythidae), y se entregan
antecedentes del hábitat.
ABSTRACT
The larva and pupa of Cycloderus signaticollas F. et G. (Coleoptera: Pythidae) is described and habitat
data is added.
INTRODUCCION
El género Cycloderus Solier (1851), agrupa en
nuestro país 5 especies ubicadas por Blackwel-
der (1954) en la familia Oedemeridae (Ascle-
rini). Posteriormente Lawrence (1982) redes-
- Cribe la familia Pythidae y ubica a Cycloderus en
los Pilipalpinae.
Recientemente se ha tenido oportunidad
de colectar formas juveniles, seguir el desarro-
llo y hacer observaciones de una de ellas, C.
signaticollis; como resultado de estos estudios
se describe la larva y pupa, además se hacen
observaciones de su hábitat.
MATERIALES Y METODOS
El material de este trabajo se obtuvo en la
localidad de Santo Domingo, ubicada al sures-
te de la ciudad de Valdivia (provincia de Val-
divia, Región de Los Lagos).
Las larvas colectadas ¿n situ, se dispusieron
en frascos para crianza acondicionados con el
mismo sustrato donde fueron colectadas; una
vez emergido el primer adulto, se procedió a
fijar en alcohol etílico al 75% las larvas del
último estadio y una pupa. Para el examen de
las larvas y pupa se ocupó un microscopio
estereoscópico Leitz (83X, 32X y 96X). Para la
¡Sociedad Chilena de Entomología, Casilla 21132,
Santiago-Chile.
(Recibido: 9 de junio de 1989. Aceptado: 19 de octu-
bre de 1989).
nomenclatura de las larvas se utilizó el sistema
propuesto por May (1967), pero con ligeras
modificaciones; para la pupa se usó el sistema
de May (1981) modificado.
RESULTADOS
Larva: Cuerpo alargado y deprimido dor-
so-ventralmente con sus lados subparalelos.
Cabeza subcircular; sutura frontal bien defini-
da, formando en la región posterior una es-
tructura cardiforme (Fig. 1); antenas (Fig. 2)
de tres segmentos subiguales, respectivamen-
te de 0,50, 0,35 y 0,32 mm de longitud, seg-
mento terminal presentando en su extremi-
dad largas cerdas, segmento medio con su ápi-
ce externo con una estructura en forma de
papila, segmento basal de ancho igual a dos
veces el ancho del segmento terminal. Ocelos
visibles, ubicados antero-lateralmente. Palpo
maxilar (Figs. 3 y 4) de tres segmentos sub-
iguales en longitud, segmento medio con una
cerda en la región apical. Palpo labial (Fig. 5)
de dos segmentos bien diferenciados. Mandí-
bulas como en la figura 6 (ventral) y 7 (dorsal).
Pronoto y segmentos abdominales sub-
rectangulares, mesonoto y metanoto sub-
circulares; patas protorácicas, meso y metato-
rácicas como en la figura 8. Desde el mesonoto
hasta el 8 segmento abdominal en vista dorsal
con una sutura transversal nítida de color café
en la parte anterior de cada segmento. Espi-
ráculos redondos de 0,07 mm de diámetro, el
primero ubicado en la región pleural entre el
80 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
a)
A
S
Figuras 1-10: Larva de Cycloderus signaticollis F. et G. 1. Cabeza, pronoto y mesonoto, vista dorsal. 2. Antena. 3. Palpo
maxilar, vista ventral. 4. P. maxilar, vista dorsal. 5. Palpo labial, vista ventral. 6. Mandíbula, vista ventral. 7. Mandíbula, vista
dorsal. 8. Pata metatorácica. 9 y 10 Ultimos segmentos abdominales; vista dorsal y ventral, respectivamente.
an = Antena, cb = Cabeza, = mn Mandíbula, ms = Mesotórax, pm = Palpo maxilar, pr = Protórax, ta = Tarso, tb = Tibia,
oc = Ocelo, fr = Sutura frontal, ur = urogomphi.
Jackson: Descripción de larva y pupa de Cycloderus signaticollis 81
pronoto y mesonoto, el segundo ubicado en el
primer segmento abdominal orientado hacia
la región dorso-lateral anterior, desde el 2? al
8” segmento se orientan hacia la región ven-
tro-lateral anterior. 8 segmento con una sutu-
ra media, superficie dorsal y ventral (Figs. 9 y
10) con diminutos puntos al igual que el últi-
mo segmento abdominal, este 9% segmento
presentando “urogomphi” bífido.
Coloración general amarillenta, con las re-
giones más esclerozadas de color ámbar; man-
díbulas, extremidades de los cercos y ápice de
las uñas de color negro.
En la Tabla 1 se presentan las medidas para
algunos caracteres de la larva y en la Tabla 2 se
indica el índice de cerdas.
Material Examinado: Chile, Valdivia (Provin-
cia de Valdivia), Sto. Domingo. 2 larvas del
22.12.1984, colectadas bajo corteza de Notho-
fagus dombey: (Mirb.) Oerst. (Fagaceae), leg. D.
Jackson; 11 larvas del 05.03.1986, colectadas
bajo corteza de Laurelia sempervirens (R. et P.)
Tul (Monimiaceae), leg. D. Jackson; 2 larvas
del 01.05.1982, colectadas bajo corteza de L.
sempervirens, leg. D. Jackson; 15 larvas del
01.09.1984, colectadas bajo corteza de N. dom-
bey2, leg. D. Jackson.
Pupa: Aspecto general como en la figura 11.
Largo total 10,70 mm. Ancho máximo 2,80
mm. Cuerpo con cutícula no pubescente. Pro-
noto de 1,12 mm de largo por 1,73 mm en su
ancho máximo, con cerdas largas de igual lon-
gitud, cada una naciendo de un proceso agu-
do (Fig. 12). Mesonoto y metanoto con cerdas
de menor longitud que las del pronoto. Ojos
globosos, escapo alcanza el margen inferior de
los ojos, palpo maxilar 2,5 veces más largo que
ancho. Pteroteca 1, alcanza hasta la mitad del
segundo segmento abdominal; pteroteca 2,
sobrepasa el segundo segmento abdominal.
Segmentos abdominales con las cerdas dor-
so-laterales mayores que las dorsales, séptimo
segmento con el borde posterior bilobulado
(Fig. 13). Cerco en forma de cono agudo con
su ápice curvado, rodeado por 6 largas cerdas
(Fig. 14), y dos veces más largo que ancho.
Fémures con tres cerdas, una apical, una ex-
terna y otra interna, todas de igual longitud.
Espiráculos redondos de 0,1 mm de diámetro.
Coloración general blanca, con las cerdas y
ápice de las mandíbulas de color ámbar.
En la Tabla 3 se presenta el índice de
cerdas.
Material Examinado: Chile, Valdivia (Provin-
cia de Valdivia), Sto. Domingo. 2 pupas obte-
nidas a partir de larvas criadas con aserrín de
laurel (Laurelia sempervirens) las cuales pupa-
ron el 23.10.1986.
Observaciones del hábitat: Las larvas se en-
cuentran durante todo el año (observaciones
personales) y es frecuente encontrarlas al des-
prender la corteza de árboles decadentes,
principalmente de laurel (Laurela semperu-
rens) y coihue (Nothofagus dombey:) junto a lar-
vas de Elateridae y adultos de Uleiota chilensis
(Bl.) (Cucujidae), Tropopsis marginicollis Sol., T.
TABLA 1
MEDIDAS EN MM DE LA LARVA
DE CYCLODERUS SIGNATICOLLIS F. ET G.
Largo total 8
Ancho máximo 8
Ancho cabeza 8
Largo cabeza 8
Ancho pronoto 8
Ancho mesonoto 8
Ancho metanoto 8
1
Largo cerco 1
Ancho entre espina externa
del “urogomphi” 11
Ancho entre espina interna
del “urogomphi” 11
Rango X SIC Ae
20.0-23.0 22.0 1.0 4.5
1.7-3.1 2.8 0.17 6.1
1.7-2.0 1.8 0.11 6.1
1.2-1.4 162 0.12 10.0
1.8-2.1 1.9 0.13 7.1
1.9-2.5 2.2 0.18 8.2
2.1-2.5 2.3 0.13 5.6
1.5-1.8 1.6 0.08 5.0
1.1-1.3 162 0.06 5.0
0.4-0.6 0.5 0.07 14.0
82
Cabeza
Epicranial posterior
Epicranial dorsal
Epicranial lateral
Epicranial frontal
Epicranial clipeal
Epicranial labral
Epicranial mandíbular
Maxila
Lacinia dorsal
Lacinia ventral
Lacinia basiventral
Palpal
Estipal
Palpiferal
Labio
Poslabial
Prelabial
Ligular
Protórax
Pronoto dorsal
Pronoto ventral
Pronoto medioesternal
Mesotórax dorsal
Mesotórax subventral
Mesotórax subespiracular
Mesotórax subpleural
Metatórax dorsal
Metatórax subventral
Rev. Chilena Ent. 17, 1989
TABLA 2
INDICE DE CERDAS DE LA LARVA
DE CYCLODERUS SIGNATICOLLIS F. ET G.
4 Metatórax pleural
2+1 Metatórax subpleural
1+1 Abdomen I-VII
l Dorso-lateral
1 Dorsal
3-4 Ventral
1 Subespiracular
Pleural
5-6 Abdomen VIII
3-4 Dorso-lateral
1 Ventral
2-3 Subespiracular
l Pleural
1 Abdomen IX
Dorso-lateral
1 Anal
1+1 Anal lateral
1 Cerco
Patas
4+1 Coxa
2 Trocánter
1 Fémur
3 Tibia
2 Tarsal
1 Antena
1+1 19 antenito
3 2” antenito
2 3 antenito
TABLA 3
INDICE DE CERDAS DE LA PUPA
DE CYCLODERUS SIGNATICOLLIS F. ET G.
Cabeza
Vertical
Supraorbital
Orbital
Postantenal
Frontal
Pronotum
Apical
Anterolateral
Posterolateral
Discal
Basal
Mesonotum
Metanotum
Abdomen I
Dorsal
Lateral
Subespiracular
Abdomen II
Dorsal
Lateral
Subespiracular
++
Abdomen I11-VI
Dorsal
Lateral
Subespiracular
Subventral
Abdomen VII-VITI
Dorsal
Lateral
Subespiracular
Subventral
Ventral
Abdomen IX
Dorsal
Lateral
Subespiracular
Subventral
Ventral
Cerco
== NO O wyN N —= 0 NN
DS SMS
ackson: Descripción de larva
upa de Cycloderus signaticollis 83
Figuras 11-14: Pupa de Cycloderus signaticollas F. et G. 11.
Vista general dorsal. 12. Proceso agudo con cerda. 13.
Séptimo segmento, vista dorsal. 14. Cerco. an = antena;
cer = cerco; pms = pata mesotorácica; pmt = pata metato-
rácica; ppr = pata protorácica; pr = pronoto; ptl = ptero-
teca 1; pt2 = pteroteca 2; tg = tergito.
biguttata Sol. (Carabidae) y Phanerops elongata
Sol. (Tenebrionidae). Cuando se encuentran
en laurel es posible encontrar también larvas
de Rhyephenes maillei (Gay 8: Sol.) (Curculio-
nidae).
Bajo la corteza de laurel y coihue se encuen-
tra materia en descomposición junto a ácaros y
varias especies de hongos que permiten la for-
mación de un sustrato adecuado para el desa-
rrollo de la fauna acompañante las cuales sir-
ven posiblemente como alimento a las larvas
de C. signaticollas F. et G.
En cuanto a los adultos de C. signaticollis, se
han sacudido de ramas vivas de colihue (Notho-
fagus dombeyt) y roble (N. obliqua), en los meses
de octubre a diciembre.
De acuerdo a Watt (1987) el hábitat de los
Pythidae estaría en concordancia con lo obser-
vado para C. signaticollis. Por último se puede
diferenciar Cycloderus de los géneros de Nueva
Zelanda (Exocalopus, Techmessodes y Techmessa)
por los siguientes caracteres:
Urogomphi bífido, 8” segmento abdominal
no mayor de dos veces el largo del 9” segmen-
to, 9” esternito con una línea basal de peque-
ñas espinas, 8” y 9” segmento abdominal con
puntuación numerosa; ocelos presentes.
De acuerdo a los caracteres mencionados
anteriormente, Cycloderus estaría más relacio-
nado con el género Techmessodes Broun, 1893.
AGRADECIMIENTOS
Al Dr. Darren A. Pollock, por información
bibliográfica; al Lic. M. Elgueta D. por la lectu-
ra del manuscrito y sus sugerencias, y a dos
correctores anónimos.
LITERATURA CITADA
BLACKWELDER, R.E. 1945. Checklist of the Coleopterous
insects Of Mexico, Central America the West Indies
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Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 85-88
NIDOS POLIGINICOS DE VESPULA GERMANICA (F.)
(HYMENOPTERA: VESPIDAE) Y EUSOCIABILIDAD
ELISABETH CHIAPPA T.'
RESUMEN
En observaciones realizadas en los últimos años se ha demostrado la existencia de colonias invernantes
de Vespula germanica (F.) en Chile; uno de los aspectos importantes en su organización social es la
presencia de varias reinas funcionales simultáneas. La existencia de poliginia significa una estrategia
diferente frente a las condiciones ambientales y plantea dificultades en la interpretación de la
organización eusocial. Se plantean las expectativas de éxito adaptativo que pueden lograr estas
colonias poligínicas.
ABSTRACT
The presence of overwintering colonies of Vespula germanica (F.) has been evident in observations
carried out in the last few years in Chile. One of the more interesting aspects of their social organization
is the simultaneous presence of several functional queens. This is another strategy in facing the
environmental conditions. Different possibilities of adaptative success and problems in the
understanding this eusocial organization are discussed.
INTRODUCCION
En los últimos años hemos realizado varias
observaciones sobre la biología de Vespula ger-
manica (F.) en la región central de Chile, inte-
resados en la comprensión de su comporta-
miento social y, en particular, en las adaptacio-
nes que parecen importantes en la adquisición
de la eusociabilidad.
El término eusociabilidad, acuñado por Ba-
tra (1966), es utilizado para caracterizar aque-
llos grupos sociales con generaciones de adul-
tos que se sobreponen en el tiempo, presencia
de obreras no reproductivas y cuidado de las
crías por los adultos de la colonia; en los gru-
pos altamente especializados este hecho se re-
fleja también en la presencia de una sola reina
reproductora (Michener, 1974).
El estado de eusociabilidad se presenta en
esta especie, tanto en colonias monogínicas
normales como en aquellas poligínicas de lar-
ga duración, llamadas invernantes por Tho-
Laboratorio de Zoología. Universidad Católica de
Valparaíso. Casilla 4059, Valparaíso.
(Recibido: 6 de septiembre de 1989. Aceptado: 10 de
octubre de 1989).
mas (1960) y Spradbery (1973), quienes las
describieron para Nueva Zelanda y Tasmania,
respectivamente; éstas presentan un interés
especial, tanto desde el punto de vista ecológi-
co como evolutivo, porque significan una es-
trategia diferente frente al medio ambiente
(Chiappa et al., 1987).
El estudio de estas colonias plantea varios
problemas interesantes para comprender las
adaptaciones adquiridas por la especie en re-
lación a la fijación de la monoginia y a su
carácter de estado derivado. La poliginia, co-
mo una condición posiblemente regresiva,
tendría alcances novedosos, en cuanto a su
reaparición en los grupos eusociales con mo-
noginia establecida, pudiendo interpretarse
como una posibilidad de variación ante condi-
ciones climáticas distintas a las encontradas en
su zona de origen: la región mediterránea.
Nidos poligínicos para el género Vespula,
con varias reinas funcionando simultánea-
mente, han sido citados por Spradbery (1973)
y Duncan (1939). Algunas características 1m-
portantes que se pueden destacar de estas co-
lonias son su gran actividad y la enorme canti-
dad de huevos, larvas y obreras que existen en
el nido (Chiappa et al., 1987). Por lo demás,
86 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
hay presencia permanente de machos desde
fines del primer ciclo y reinas nuevas muy
tardías respecto a la temporada de producción
de individuos reproductivos de los nidos nor-
males, considerando que hubo una colonia
inicial fundadora. Interesante es también, la
gran variabilidad del tamaño de los machos
respecto al normal, ya que pueden presentar
tallas tan pequeñas como los de una obrera o
tan grandes como los de una reina.
El problema en que se centra este trabajo, es
el de la poliginia de colonias invernantes de
Vespula germanica, un hecho tan distinto y fue-
ra de lo normal, en comparación con las de
ciclo anual que presentan una monoginia esta-
ble. Nos interesa analizar las expectativas de
éxito adaptativo que pueden tener las colonias
poligínicas.
MATERIALES Y METODOS
Se dispuso de 5 colonias de 13 a 20 meses de
duración, colectadas en la IV y V Región; to-
das eran subterráneas y fueron extraídas des-
pués de haberlas anestesiado con un algodón
empapado en cloroformo, colocado durante
15 minutos en el túnel de entrada.
La condición de poliginia se constató en
todos los casos, contando las reinas presentes y
determinando en la estructura del nido, el
número de núcleos iniciales independientes,
lo que se consideró como el mejor indicador
de poliginia.
RESULTADOS Y DISCUSION
En los 5 nidos estudiados, el número de reinas
funcionales fluctuaba entre 3-5, considerado
relativamente bajo de reinas en relación al
citado por Spradbery (1973) y Duncan (1939),
lo que se puede entender por condiciones cli-
máticas menos favorables o por un mejor sitio
de nidificación (Chiappa et al., 1987); en este
sentido las construcciones aéreas podrían ser
más fáciles de detectar por las nuevas reinas
fecundadas, como lugares de protección para
hibernar y/o inicio de un nuevo nido, dando al
mismo tiempo más posibilidades de expansión
ala colonia poligínica, a diferencia de los nidos
subterráneos de localización más difícil y cre-
cimiento más restringido. Hay que hacer no-
tar, que el número de machos y de reinas
vírgenes de estos nidos poligínicos es mucho
mayor y que son castas más permanentes en el
tiempo que los de una colonia eusocial mono-
gínica (Chiappa et al., 1987).
En una primera consideración, no cabe du-
da que las colonias invernantes de V. germanica
corresponden a grupos eusociales, porque
cumplen con todos los requisitos nombrados
(al menos en la primera parte de su ciclo), pero
habría que considerar las posibilidades de mo-
noginia y poliginia.
El problema se presenta al confrontar la
existencia de estos grupos invernantes, poligí-
nicos, con las teorías de mayor aceptación que
tratan de explicar la eusociabilidad.
La teoría de la Selección Generacional de
Hamilton (1964a, 1964b), “kin selection”, tie-
ne como ideas básicas: el sistema de reproduc-
ción por haplodiploidía de los Hymenoptera y
el aumento de frecuencia de un alelo, no sólo
directamente por medio de la mayor cantidad
de descendencia de sus portadores, sino tam-
bién por la conducta “altruista” de los porta-
dores con mayor relación genética, aún a costa
de que ellos no produzcan descendencia
propia.
Para que esto se cumpla, se requiere una
sociedad con una única reina fecundada por
un solo macho, cuyas hijas serán las obreras
estériles de la colonia que cuidarán a sus pro-
pias hermanas, porque el índice de relación
genético entre ellas será más significativo que
con los posibles descendientes directos. En es-
te caso, como el macho es haploide, todos los
espermios que produce son prácticamente
idénticos y, por lo tanto, las hermanas tienen
un 100% de los genes de su padre en común.
La reina es diploide y las hermanas comparten
la mitad de los genes de su madre (como ocu-
rre en todos los organismos diploides). Como
la mitad de los genes de las obreras son de la
madre y la otra mitad del padre, las hermanas
comparten entre sí lo siguiente:
padre
1 x 1/2 + 1/2 x 1/2 = 3/4 de genes compar-
tidos
A pesar de lo atractivo de la teoría, muy
pronto se hicieron notar dificultades como,
por ejemplo, la observación de cópulas múlti-
ples en la mayoría de los grupos sociales (An-
dersson, 1984). Esta multiplicidad de cópulas
es más frecuente en las especies más avanza-
Chiappa: Nidos poligínicos de Vespula germanica y eusociabilidad 87
das que en las más primitivas, contrariamente
a una tendencia evolutiva como debería en-
tenderse según Hamilton. Si las hermanas tie-
nen diferente padre, compartirán sólo 1/4 de
sus genes, todos a través de su madre.
En el caso de los nidos invernantes de Ves-
pula germanica, no sólo hay problema de pa-
dres múltiples, lo que podría ser solucionado
por el uso secuencial de espermios, como ha
sido propuesto por Trivers 8 Hare (1976),
Orlove (1975), Charnov (1978) y Cole (1983),
sino además hay varias reinas reproductoras
simultáneamente funcionales.
Las reinas nuevas tienden a buscar un lugar
cercano al nido de origen para hibernar y
posteriormente nidificar, por lo que es muy
factible que las colonias poligínicas tengan
reinas y, por tanto, el índice de relación entre
las obreras hijas, que son primas entre sí, es
sólo de 3/8 (Strassman, 1981), lo que está muy
por debajo de la cantidad exigida por la teoría
de la haplodiploidía de Hamilton (1964a,
1964b).
Finalmente, si las reinas de esos nidos no
son hermanas, lógicamente no hay parentes-
co alguno, ya que las posibilidades de un mis-
mo padre son demasiado remotas.
Un planteamiento mucho más amplio y con
más argumentos para solucionar los proble-
mas que la teoría de Hamilton (1964a, 1964b)
no explica suficientemente, es la del Reconoci-
miento de Parentesco, que ha sido mejor pun-
tualizada por Hólldobler y Michener (1980);
de acuerdo con ella, las obreras son capaces de
evaluar la relación genética que tienen respec-
to de otros miembros de la colonia, por ejem-
plo, por medio de olores (Barrows et al., 1975).
Esta capacidad estaría dada por un alelo dis-
criminador que es condición para los grupos
sociales y, de esta manera, un ejemplar puede
favorecer a aquellos individuos que compar-
ten con él un alto número de genes.
Al contrastar esta teoría con lo que sucede
en colonias invernantes, tenemos que hay
obreras que comparten los genes de una mis-
ma madre y que, eventualmente, son hijas del
mismo padre, mientras otras presentan un pa-
rentesco más lejano, descendientes de reinas
hermanas o no parientes y con distinto padre;
la presencia de un alelo discriminador haría
posible el reconocimiento de las primeras so-
bre las últimas.
De acuerdo a esto, la poliginia no es dema-
siado desventajosa para la conservación de la
eusociabilidad en Vespula, sin embargo, anda
lejos de ser la condición ideal, dado que hay
muchas obreras con escaso índice de parentes-
co. Esta situación no se produce en colonias
eusociales de ciclo anual donde hay una sola
reproductora.
Otra manera muy distinta de ver el proble-
ma, es considerar estas colonias como un siste-
ma de mejor aprovechamiento de condiciones
especiales transitorias del medio, que no tie-
nen relación con la eusociabilidad. En este
aspecto, se aprecia la construcción de nidos
que alcanzan enormes proporciones, con gran
número de obreras, con mucha actividad y
agresividad, colectando presas a través del
tiempo para alimentar una gran cantidad de
larvas.
Aunque las colonias invernantes, estudia-
das por nosotros, tienen caracteres eusocia-
les, según nuestras observaciones, presentan
los siguientes hechos que atentan contra ella:
— Una menor relación genética entre las
obreras comparadas con las colonias nor-
males.
— Una desorganización en la producción de
machos, que aparecen a lo largo de todo el
tiempo de prolongación de la colonia, lo
que significa una pérdida de la protandria
con ventajas adaptativas de las colonias
anuales, porque estos machos aparecen a
veces en períodos muy alejados de la pre-
sencia de reinas susceptibles de ser fecun-
dadas.
— Por lo demás, el gran número de machos
corresponde a un beneficio trófico (trofala-
xis entre juveniles y adultos), sólo a nivel de
larva, pero a nivel de adultos una carga
negativa para la economía de la colonia,
dado que tienen que ser alimentados por las
Obreras.
— Se observa producción de reinas nuevas de-
masiado tarde en la temporada las que tie-
nen evidentes desventajas frente al clima,
pero mayor cantidad de recursos alimenti-
cios, posibilidades de fecundación y de ubi-
cación de lugares protegidos para hibernar.
En nuestra opinión, las colonias invernan-
tes de V. germanica no representan una ventaja
desde el punto de vista de la eusociabilidad.
Pensamos que la condición estable, con ven-
88 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
taja selectiva, está obviamente conseguida en
las colonias normales de ciclo anual, con un
índice mayor de parentesco entre los miem-
bros de la colonia dado por una sola reina
reproductora y con una total adaptación a los
ambientes con marcadas diferencias climáticas
entre verano e invierno, con una actuación de
grupo altamente eusocial que presenta gran-
des ventajas a condiciones ecológicas severas,
frente a grupos menos organizados social-
mente.
Además, esto mismo indicaría la no adapta-
bilidad de esta especie a zonas desérticas ni
tropicales, es decir, creemos que el avance de
Vespula germanica hacia el Norte de Chile ya
está terminado y que en Argentina el límite
norte no debiera sobrepasar hacia climas de-
masiado tropicales.
AGRADECIMIENTOS
Este trabajo está basado en una presentación
al X Congreso Latinoamericano de Zoología
en octubre de 1986, realizado en Viña del
Mar, Chile.
Ofrezco mis sinceros agradecimientos al
profesor Haroldo Toro G., de la Universidad
Católica de Valparaíso, por sus críticas, ideas,
discusiones y por dar tiempo a su paciencia
para la lectura y revisión de este trabajo.
También a las estudiantes Cecilia Morales y
Jenny Cook por la ayuda prestada en las ob-
servaciones de los nidos.
LITERATURA CITADA
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APORTE AL CONOCIMIENTO DE LOS HALIPLIDAE DE CHILE.
II. DESCRIPCION DEL TERCER INSTAR LARVAL
DE HALIPLUS VALDIVIENSIS MORONTI, 1980
(COLEOPTERA: DYTISCOIDEA)
Juan MoronI B.'
RESUMEN
Se describe el tercer estado larval de Haliplus valdiviensis Moroni, 1980, con dibujos del aspecto dorsal y
ventral y de diversas estructuras. Se confirma la posición subgenérica desde el punto de vista morfo-
funcional y se indican algunos antecedentes bioecológicos conocidos, que tienen relación con este
aspecto.
ABSTRACT
The third-instar larva of Haliplus valdiviensis Moroni, 1980, is described, drawings of dorsal and ventral
habitus and several structures are given. The subgeneric position is corroborated and some known
bioecological data are given.
INTRODUCCION
Los halíplidos son coleópteros acuáticos poco
abundantes, su hábitat lo constituyen cuerpos
de aguas someras con presencia de abundan-
tes masas de algas filamentosas, plantas acuát1-
cas y fondos ricos en detritus.
La familia Haliplidae está representada en
nuestro país solamente por el género Haliplus
Latreille, con tres especies ubicadas en el sub-
género Liaphlus Guignot (Moroni, 1980): H.
fuscipennis Germain, H. subseriatus Zimmer-
mann y A. valdiviensiss Moroni. Hasta ahora no
había sido descrito ningún estado inmaduro
de estas especies.
MATERIALES Y METODO
Las larvas, recolectadas en la provincia de Val-
divia, durante el verano de 1971, fueron ex-
traídas de entre masas de algas filamentosas y
plantas acuáticas de la orilla de una laguna,
ubicada al costado del camino, a 13 km al N de
la ciudad de Valdivia. El material retirado fue
¡Sociedad Chilena de Entomología, Casilla 21132,
Santiago, Chile.
(Recibido: 23 de septiembre de 1989. Aceptado: 26 de
octubre de 1989).
procesado en el laboratorio, separando los
ejemplares adultos y las larvas, las que fueron
fijadas en alcohol isopropílico. Para examinar-
las, se las dispuso en cápsulas de Petri con un
fondo levemente oscuro. El estudio, medicio-
nes y dibujos se realizaron con microscopios
estereoscópicos Wild M3 (12.8-160 X),
Bausch-Lomb (14-60 X) y Nikon-102 con cá-
mara lúcida (13.2-80 X).
En el estudio morfológico se consideró el
tamaño y forma de diversas estructuras y
apéndices del cuerpo, coloración, tegumento,
puntuación, pilosidad y fanéreos. Se confec-
cionaron láminas presentando el aspecto dor-
sal y ventral, estructuras bucales, antenas y
patas. Se consideraron además, aspectos siste-
máticos relacionados con la posición subgené-
rica de la especie, de acuerdo a la forma y
función de las patas protorácicas, algunos an-
tecedentes bioecológicos referidos por algu-
nos autores, que tienen relación con el aspecto
anterior y finalmente se indica la bibliografía
citada.
DESCRIPCION (LARVA MADURA
O TERCER INSTAR)
Tamaño: medidas como en la Tabla 1.
Forma corporal: subcilíndrica, de tipo eruci-
90 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
TABLA 1
MEDIDAS DEL TERCER INSTAR LARVAL
DE HA. VALDIVIENSIS (EN MM), PARA 2 LARVAS
Longitud corporal total
Ancho corporal máximo, en 1% seg. abdominal
Longitud cabeza
Ancho cabeza, incluidos los ojos
Longitud mandíbula, desde ápice a lóbulo posterior
Ancho mandíbula, en la base
Longitud maxila, incluidos palpos
Ancho maxila
Longitud antena
Longitud pronoto
Ancho pronoto
Longitud mesonoto
Ancho mesonoto
Longitud metanoto
Ancho metanoto
Longitud total abdomen
Ancho, en 1% seg. abdm. incluidos mamelones tergales
157 12,0
1,82 1,85
0,67 0,72
0,60 0,63
0,25 0,28
0,19 0,22
0,26 0,28
0,13 0,15
0,23 0,25
0,80 0,83
1,40 1,42
0,46 0,50
1,40 142
0,47 0,52
1,48 1,51
9,40 9,43
1,58 1,61
forme, muy particular de la familia; cabeza
globosa e inclinada; cara dorsal del tórax re-
vestida de una placa escutelar o escudo dorsal;
protórax más grande y con el borde anterior
redondeado; meso y metatórax anchos y cor-
tos; abdomen de 10 segmentos que se angos-
tan gradualmente hacia el extremo caudal, el
último muy angosto, aguzándose hacia el ápi-
ce, donde termina bifurcado en dos pequeños
cercos. Tanto tórax como abdomen provistos
de mamelones tergales (Figs. 1 y 2).
Tegumento: en general esclerosado, especial-
mente en la cabeza y cara tergal o dorsal del
tórax y abdomen, fina y abundantemente es-
pinuloso, sobre todo en los tubérculos y ma-
melones tergales. Membranoso en las regio-
nes pleurales. Cara esternal o ventral con al-
gunas zonas esclerosadas, especialmente en la
cabeza, base de las patas y esternitos abdomi-
nales, estos últimos desprovistos de espínulas
a excepción de 10% o último segmento (Figs. 1
y 2).
Coloración: en general amarillenta a hialina
en las regiones membranosas y amarillenta
café a negruzca en las regiones más o menos
esclerosadas.
Cabeza: globosa, inclinada, con suturas poco
notorias. Antenas birameadas, de cuatro seg-
mentos, los dos primeros pequeños y cilindri-
cos, el tercero más largo y claviforme, el cuarto
constituido por dos pequeños artículos acicu-
lares, de los que el externo es más grande y
provisto de una seda terminal (Fig. 3). En las.
regiones temporales de la cabeza, se observa
un área ocelar sobresaliente, con seis ocelos
ovalados y redondeados en cada una de estas
áreas. Detrás, en el epicráneo se presenta un
tubérculo pilígero a cada lado. Mandíbulas
cortas y anchas, de forma subtriangular; la.
porción anterior cilíndrica, córnea, con el ápi-
ce agudo incurvado hacia adentro; el borde
externo redondeado y el interno sinuoso y
escotado, formando un diente en ángulo rec-
to; base con un cóndilo que articula al cráneo.
En el ápice de la mandíbula se observa un
orificio que corresponde al extremo distal del
canal completo que la recorre y termina de-
bajo del ángulo frontal (Fig. 4). Maxilas débil-
mente esclerosadas, con el estipe largo y grue-
sO, provisto en su extremo distal de numerosas.
y finas sedas; galea inarticulada y palpos de
tres artejos (Fig. 5). Labio aproximadamente
de forma triangular, cuya base corresponde al
mentón y la parte distal al estipe, que es bilo-
bulado por delante formando la “lengúeta”;
palpos biarticulados (Fig. 6).
Tórax: protórax con el margen anterior re-
dondeado, más largo que el meso y metatórax
que son más bien cortos y anchos. Dorsalmen-
te, cada segmento provisto de una placa escu- |
telar o escudo dorsal esclerosado. Notables |
Moroni: Descripción de larva de Haliplus valdiviensis 91
LIRA
las
Figuras 1-2. Larva de Haliplus valdiviensis Moroni. 1. vista
dorsal; s.f. = sutura frontal; t.p.t. = tubérculo pilígero
temporal; md. = mandíbula; ant. = antena; ep. = epicrá-
neo; m.t.e. = mamelón tergal externo; m.t.¡. = mamelón
tergal interno. 2. vista ventral; a.o. = área ocelar; hyp. =
hypostoma; mx. = maxila; lb. = labio; a.a. = área anal.
son las seis formaciones o lóbulos aguzados
que se observan en el escudo dorsal de los
0.5 mm.
1.0 mm.
Figuras 3-9. Detalles de la larva de Haliplus valdiviensis
Moroni: 4. Mandíbulas; o0.c.a. = orificio canal de absor-
ción. 5. Maxilas; p.t. = palpo triarticulado; g. = galea; e. =
estipe. 6. Labio; 1. = “lengúeta”; p.b. = palpos biarticula-
dos; e. = estipe. 7. Pata protorácica; c. = coxXa; tr. =
trocantín; f. = fémur; t. = tibia; ta. = tarso; u. = uña. 8.
Pata mesotorácica. 9. Pata metatorácica.
segmentos torácicos. De éstos, dos se ubican
en los márgenes laterales, son los mamelones
tergales externos y cuatro cerca del margen
posterior de la placa, son los mamelones terga-
les internos. Los externos terminan en una
punta aguda curvada hacia adentro, en tanto
que los internos son desiguales, siendo los dos
centrales más voluminosos y más largos. En
general, los mamelones tergales son bastante
esclerosados y están cubiertos de pequeños
tubérculos espiculiformes, que abundan en la
placa dorsal protorácica, disminuyendo gra-
dualmente su número en el meso y metatórax.
La región pleural o lateral del tórax es
membranosa. La región ventral se presenta
esclerosada, especialmente en la base de las
patas —delante y detrás de su inserción— epí-
mero y esterno y se encuentra cubierta, aun-
que en menor grado que en la cara dorsal, de
tubérculos espiculiformes en las zonas pro,
meso y metasternales y episternales. A los cos-
tados del meso y metatórax existe un par de
estigmas.
Las patas son desiguales y constituidas por
seis segmentos: coxa, trocantín, fémur, tibia,
tarso biarticulado y uña única que articula di-
rectamente al tarso, por carecer éste de empo-
dio. Se caracterizan por tener coxas volumino-
sas, trocantín muy pequeño, fémur de menor
92 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
longitud que la tibia, tarso con artejos desigua-
les, uña larga y angosta, curvada, y en general
presentan pocos pelos sensoriales y espinas
(Figs. 7, 8 y 9).
Abdomen: subcilíndrico, deprimido ventral-
mente y formado por diez segmentos. Cara
tergal (Fig. 1) con los segmentos provistos de
un escudo dorsal esclerosado, con tubérculos
espiculiformes, semejantes al escudo meso y
metatorácico y presentando mamelones terga-
les lobulares externos e internos. Los mamelo-
nes internos son sólo dos por cada segmento y
corresponden a los centrales ya que los latera-
les están reducidos en el primer segmento ab-
dominal a un grupo de tubérculos pilígeros,
desapareciendo en el resto de los segmentos
abdominales. Son más angostos que en el tó-
rax y su tamaño decrece hacia los últimos seg-
mentos. Décimo segmento o último, largo y
aguzado hacia el extremo, provisto de abun-
dantes tubérculos espiculiformes y pilígeros y
con un par de cercos que rematan en una seda
terminal. Cara esternal (Fig. 2) en general es-
clerosada, desprovista de tubérculos espicu-
liformes, salvo en el 3%, 4” y 5% segmentos que
presentan unos pocos en la zona lateral supe-
rior y el último segmento que posee abundan-
tes tubérculos espiculiformes y pilígeros, tal
como en la cara tergal. Ultimo segmento abdo-
minal con un área anal membranosa, ubicada
en la región proximal, en la que destaca una
formación anular con una especie de incisión
central que corresponde al ano. Todos los seg-
mentos abdominales, con excepción de los dos
últimos, provistos de un par de estigmas late-
rales, ubicados a los costados cerca de la región
pleural membranosa.
Material examinado: 2 larvas, colectadas por
el autor junto con 2 adultos, machos en la
localidad-tipo de la especie, Fundo Los Pinos,
13 km al N de la ciudad de Valdivia, provincia
de Valdivia, 23-12-1971, en laguna de aguas
someras con abundante vegetación acuática, a
orilla de camino.
POSICION SUBGENERICA DE
HALIPLUS VALDIVIENSIS
Las larvas de Haliplus pueden ser reunidas en
dos grupos morfofuncionales (Seeger, 1971):
uno denominado “tipo colgante”, porque las
larvas tienen sus patas protorácicas con lóbu-
los tibiales como un dedo pulgar, de manera
que cuando se alimentan, apenas se desplazan
hacia adelante, en cambio atraen los filamen-
tos de algas hacia las mandíbulas con sus patas
anteriores. Los subgéneros Neohaliplus Neto-
litzky y Haliplinus Guignot, pertenecen a este
grupo. El otro grupo llamado “tipo trepador”,
comprende larvas que no poseen lóbulos tibia-
les en sus patas protorácicas,de tal forma que
deben trepar a lo largo de los tallos de las
plantas acuáticas, especialmente Caráceas y de
las algas. Los subgéneros Haliplus s. str. (Guig-
not) y Liaphlus Guignot, pertenecen a este gru-
po (Van Vondel, 1986) (Figs. 10 y 11).
La larva de Haliplus valdivensis, conforme a
su comportamiento en el medio acuático y a
las características morfológicas descritas, esto
es, desplazarse por los tallos de las plantas, no
poseer lóbulos tibiales en las patas anteriores y
presentar mamelones tergales desiguales, so-
bresalientes hacia atrás en los segmentos ab-
dominales posteriores (Guignot, 1947), se si-
túa en el subgénero Liaphlus, lo que confirma
la posición subgenérica asignada previamente
por el autor al describir la especie a base de los
adultos, sin haber estudiado las larvas en esa
oportunidad (Moroni, 1980).
ANTECEDENTES COMPLEMENTARIOS
A continuación indicamos algunos anteceden-
tes bioecológicos, aportados por varios auto-
res, que tienen relación con el aspecto morfo-
funcional de las patas protorácicas asociado al
tipo de vegetación acuática de que se alimen-
tan las larvas y que concuerda con la agrupa-
ción que establece Seeger (1971).
Los Haliplus viven en aguas someras, estan-
cadas o corrientes, especialmente en aquellas
ricas en algas filamentosas y Caráceas, que
10 11
higuras 10-11. Tipos de patas protorácicas prehensiles de
Haliplus (modificadas de Bertrand, 1972). 10. pata sin
pulgar 11. Pata con pulgar; p. = pulgar.
Moroni: Descripción de larva de Haliplus valdiviensis 93
constituyen el alimento casi exclusivo de larvas
e imagos, no obstante no se desecha la posibili-
dad de que pudieran hacerlo de otros vegeta-
les subacuáticos.
Las larvas pueden ser encontradas entre
masas flotantes de algas o en otra vegetación,
así como en los detritos a poca profundidad,
donde se están alimentando de los filamentos,
mordiendo las células o succionando sus con-
tenidos (Pennak, 1953). Poseen mandíbulas
suctoras con un canal completo. Matheson
(1912) descubrió que con la ayuda de ganchos
que poseen las mandíbulas, perforan las pare-
des celulósicas de las algas y succionan el con-
tenido celular. Esta observación fue corrobo-
rada por Bertrand (1928), en larvas de H.
lineaticollis Marsh., en las cuales pudo ver con
nitidez trozos de filamento clorofílico de algas,
escurrir por el canal mandibular. En un estu-
dio posterior (Bertrand, 1949) sobre la ali-
mentación de las larvas de Haliplus muestra
que el modo de ataque de las larvas consumi-
doras de Caráceas no difiere casi del de las
larvas que consumen algas filamentosas. El
modo de aprehensión del filamento en todo
caso es diferente, pues mientras las larvas aso-
ciadas a Caráceas cogen el filamento entre el
tarso y la uña, las larvas asociadas a algas fila-
mentosas apoyan el “pulgar” sobre el filamen-
to y el ensamble tarso-uña forma entonces el
otro brazo de la pinza (Figs. 10 y 11).
Las larvas se desplazan con la ayuda de sus
patas meso y metatorácicas (ambulatorias). Al-
gunas para movilizarse serpentean lentamen-
te entre las masas de algas filamentosas, en
tanto que otras trepan por los tallos de plantas
acuáticas y algas.
AGRADECIMIENTOS
El autor agradece al Dr. Ariel Camousseight y
al Magister Mario Elgueta por las facilidades
ofrecidas en la Sección Entomología del Mu-
seo Nacional de Historia Natural y por sus
oportunas sugerencias.
LITERATURA CITADA
BERTRAND, H. 1928. Les larves et nymphes des Dytiscides,
Hygrobiides et Haliplides. Encyclopédie Entomologi-
que, 10: 1-366.
BeErTRAND, H. 1949. Note biologique sur les larves des
Haliplides. Bull. Soc. Ent. France, 54: 91-95, figs. 1-2.
BERTRAND, H. 1972. Larves et Nymphes des Coléopteres
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Guicnor, F. 1947. Coléopteres Hydrocanthares. In: Fau-
ne de France, 48: 1-288, 128 figs., Paris.
MATHESON, R. 1912. The Haliplidae of North America,
north of Mexico. J.N.Y. Ent. Soc., 20: 156-193.
MORONI, J. 1980. Aporte al conocimiento de los Halipli-
dae de Chile. I. (Coleoptera: Dytiscoidea). Rev. Chile-
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PEenNNAkK, R.W. 1953. Fresh-water invertebrates of the
United States. Coleoptera, Chapter 34: 558-627. Ro-
nald Press Co., New York.
SEEGER, W. 1971. Morphologie, Bionomie und Ethologie
von Halipliden, unter besonderer Berúcksichtigung
funktions-morphologischer gesichtspunkte (Halipli-
dae: Coleoptera). Arch. Hydrobiol., 68: 400-435.
Van VonDEL, B.J. 1986. Descriptions of the second and
third-instar larvae of Haliplus laminatus (Schaller) with
notes on the subgeneric status (Coleoptera: Halipli-
dae). Ent. Berichten, 46: 128-132.
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NOTAS CIENTIFICAS
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 95-96
PRIMERA MYCETOPHILA PATAGONICA HALLADA EN LAS YUNGAS DE BOLIVIA
(DIPTERA: MYCETOPHILIDAE)
JosÉ P. Durer!
RESUMEN
Se informa el hallazgo de Mycetophila pseudopicea Duret, 1983, primera especie patagónica capturada
en las Yungas de Bolivia a 1.900 m de altura.
ABSTRACT
The discovery of Mycetophila pseudopicea, the first patagonian species captured in the Bolivian Yungas,
at 1,900 m height, is hereby informed.
Al determinar un lote de micetofílidos captu-
rados en las Yungas de Bolivia se encontró un
macho cuyo aspecto externo y sus genitalias
resultaban idénticos a Mycetophila pseudopicea
Duret, 1983, especie que había sido descrita
a base de diez machos de la cordillera Nahuel-
buta, Malleco, Chile (37% 30” lat. S., 73% 45'
long. W.). Se descarta toda posibilidad de
error de etiquetado por parte del autor, por-
que el montaje del ejemplar se realizó cuando
se estaba trabajando exclusivamente con ma-
terial obtenido por el Sr. Luis E. Peña en Boli-
via. Todos los ejemplares de esa procedencia
se montaron al mismo tiempo, lote por lote,
separando cuidadosamente los de cada locali-
dad.
El hallazgo es particularmente interesante
porque es la primera vez que el autor encuen-
tra un micetofílido patagónico obtenido en
una zona subtropical boscosa como son las
yungas bolivianas.
En un trabajo reciente (Duret, 1987:75) se
ha comentado extensamente la cita de Free-
man de un macho de M. conjuncta Freeman,
1951, para Argentina, Misiones, la de Lane
' Adscripto al Museo Argentino de Ciencias Naturales
“Bernardino Rivadavia”, Buenos Aires - Argentina. Do-
micilio particular: Billinghurst 2559 - 5” Piso, 1425 - Bue-
nos Aires, Argentina.
(Recibido: 23 de febrero de 1989. Aceptado: 22 de
agosto de 1989).
para una hembra de la misma especie captura-
da en Sáo Paulo, Brasil, y la de varias especies
patagónicas obtenidas en el Norte argentino
(Tucumán, Salta), así como la de dos especies
subtropicales capturadas en el Sur de la Pata-
gonia. El autor pensaba que se trataba de erro-
res en la identificación del material, y con
mayor razón si las especies citadas se basaban
en ejemplares hembras. Pero al mismo tiempo
describía dos especies nuevas del grupo pata-
gónico de M. conjuncta, halladas en Tucumán,
Argentina, semejantes pero no iguales a las
del Sur y procedentes de un ambiente con
vegetación y clima subtropical.
En cambio, esta vez el macho obtenido en
Bolivia —Mycetophila pseudopicea— es igual por
sus caracteres externos y genitales a los ejem-
plares del Sur, excepto que tiene un tórax más
largo y delgado y un color castaño. No conoce-
mos el ambiente de donde procede, pero su-
ponemos que la vegetación y el clima serán
algo diferentes a los del hábitat patagónico.
Esta especie tenía en Chile, como área de dis-
tribución conocida, desde la provincia de Ma-
lleco, pasando por Magallanes, hasta una isla
del Archipiélago del Cabo de Hornos, lugar
éste particularmente frío y ventoso.
Material estudiado: Mycetophila pseudopicea
Duret, 1983, un macho N” 17621, de Bolivia,
Yungas del Río Zongo, 1.900 m, XI1-1984,
Luis E. Peña col.
96 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
LITERATURA CITADA Descripción de diez especies nuevas. Rev. Soc. Ent.
E E , Arg. 42(1-4): 113-124,
Durer, J.P. 1983. El Género Mycetophila Meigen, 1803, en Durer, J.P. 1987. Parte XI. Mycetophila conjuncta y M.
la Patagonia (Diptera, Mycetophilidae). Parte VII. nervitacta y siete especies nuevas asociadas. Bol. Soc.
Biol. Concepción, Chile, 58: 67-82 pp.
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 97-98
ANTECEDENTES SOBRE ESPECIES
DE RECIENTE INTRODUCCION A CHILE
(DIPTERA: STRATIOMYIDAE; HYMENOPTERA: VESPIDAE)
Mario ELGUETA D.!
RESUMEN
Se entregan antecedentes sobre dos especies introducidas recientemente a Chile. La presencia de una
de ellas, Hermetia illucens (Linnaeus), es reportada por primera vez para Chile; para la otra especie,
previamente citada para el país como Polistes gallicus, se aclara que su nombre correcto es P. dominulus
(Christ).
ABSTRACT
Data of two species recently introduced to Chile are given. Hermetia illucens (Linnaeus) is reported for
the first time from Chile. The correct name of another species is given: Polistes dominulus (Christ),
previously recorded from this country as P. gallicus.
HERMETIA ILLUCENS (LINNAEUS)
(Fig. 1)
Es una de las 50 especies del género Hermetia,
citadas como presentes en la región neotropi-
cal, ninguna de ellas registrada previamente
para Chile, y se distribuye desde USA (amplia-
mente difundida) al Sur (James, 1973).
De acuerdo a McFadden (1967), las larvas
de esta especie se encuentran en una variedad
de situaciones tales como: material de desecho
en colmenas, frutas y vegetales en descompo-
sición, salsa picante, cadáveres de animales e
incluso en materia orgánica preservada en
formalina al 10%. En Chile se han encontrado
sus larvas en diverso material orgánico en des-
composición (basurales) y en barriles que con-
tenían restos de catáfilos de cebolla en ácido
acético diluido (J. Apablaza, comunicación
personal).
Ocasionalmente esta especie ha estado
comprometida en casos de pseudo-myasis en-
térica humana y, por otro lado, ha mostrado
ser efectiva cuando se presenta en grandes
densidades, para prevenir el desarrollo de lar-
vas de mosca doméstica (Smith, 1973). Ante-
Sección Entomología, Museo Nacional de Historia
Natural, Casilla 787, Santiago-Chile.
Figura 1. Hermetia illucens (Linnaeus), aspecto general.
cedentes biológicos de esta especie se encuen-
tran bien detallados por Copello (1926). En la
colección del Museo Nacional de Historia Na-
tural, se encuentran ejemplares recolectados
desde 1981 en adelante, desde las Regiones V
(San Felipe) a la X (Valdivia).
POLISTES DOMINULUS (CHRIST)*
= Polistes gallicus: auct.
(Fig. 2)
Esta especie ha sido citada para Chile reciente-
mente por González (1989), como Polistes galli-
“Identificación efectuada por el Dr. Arnold S. Menke,
Systematic Entomology Laboratory, PSI, USDA - USA.
98 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Figura 2. Polistes dominulus (Christ), aspecto general.
cus; su nombre correcto es P. dominulus
(Christ). Las citas de esta especie como P.
gallicus en casi toda la literatura reciente, co-
rresponden a una identificación errónea; as-
pectos taxonómicos relativos a estos nombres
han sido aclarados por Day (1979), de acuerdo
a lo citado por Menke (1986).
En más de 100 ejemplares de esta especie,
sólo se ha encontrado un macho; en la colec-
ción del Museo Nacional de Historia Natural
se encuentra material recolectado en La Reina
(Santiago), en diciembre de 1987, D. Jackson
leg.
Con ésta se encontrarían presentes en Chile
continental e insular, 4 especies de Polistes:
—P. weyrachorum Willink: Tarapacá.
—P. buysson (Bréthes): Aconcagua-Santiago.
—P. olivaceus (DeGeer): Isla de Pascua.
—P. dominulus (Christ): Santiago.
AGRADECIMIENTOS
Al Dr. Arnold S. Menke (Systematic Entomo-
logy Department, PSI, USDA) por su gentile-
za al identificar la especie de Polistes, al Dr.
Jaime U. Apablaza (U. Católica, Santiago) por
los antecedentes relativos a larvas de Hermetia
llucens y al Sr. Douglas Jackson S., por la do-
nación de material de polistes. Al Sr. O. León
(Museo Nacional de Historia Natural) por las
fotografías.
LITERATURA CITADA
CorELLO, A. 1926. Biología de Hermetia illucens Latr. Rev.
Soc. Ent. Argentina, 1(2): 22-26.
Day, M. 1979. The species of Hymenoptera described by
Linnaeus in the genera Sphex, Crysis, Vespa, Apis and
Mutilla. Biol. J. Linn. Soc., 12: 45-84 (no visto).
GONZÁLEZ, R.H. 1989. Insectos y ácaros de importancia
agrícola y cuarentenaria en Chile. Impresora Ograma
S.A., Santiago.
James, M.T. 1973. Family Stratiomyidae. /n: Museo de
Zoología, Universidad de Sáo Paulo (eds.), A catalogue
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MENKE, A.S. 1986. Polistes gallicus (L.). Sphecos, 12: 21.
SMITH, K.G.V. 1973. Brachycera and Cyclorrhapha As-
chiza of minor medical importance. /n: K.G.V. Smith
(ed.), Insects and other arthropods of medical impor-
tance, pp. 203-208. British Museum (Natural Histo-
ry), London.
COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS
Bibliografía limnológica argentina 1961-1978. H.L. Ló-
pez (ed.), Biología Acuática N” 13, 140 p., 1988.
Dieciocho colaboradores entregan en 10 capítulos, las
referencias bibliográficas relativas a aspectos bióticos y
abióticos de aguas dulces de la República Argentina, pu-
blicadas entre 1961 y 1978. Esta importante recopilación
de información es de utilidad no sólo para el ámbito
argentino, sino que también se hace extensible, por el
hecho de compartir fauna y flora, a investigadores que
trabajan en áreas limítrofes.
El precio de este número es de US$ 5.00 (gastos de
envío incluidos), los pedidos de información y órdenes de
compra deben enviarse a: Hugo L. López, Instituto de
Limnología “Dr. Raúl A. Ringuelet”, Casilla de Correo
712 (1900), La Plata, Argentina (Bank Draft deben ser
enviados a nombre de Hugo L. López).
M. ELGUETA
Gayana, Zoología, 52(3-4): 199-271, 1988. Publicación de
la Facultad de Ciencias Biológicas y de Recursos Natura-
les, Universidad de Concepción.
En el primer aporte incluido en este fascículo se entrega
una clave para los géneros de Dasypogoninae (Diptera:
Asilidae), con descripción de nuevos géneros y especies,
por J.N. Artigas y N. Papavero. El segundo trabajo corres-
ponde a un análisis del género Faronta (Lepidoptera: Noc-
tuidae), efectuado por L.E. Parra y A.O. Angulo.
M. ELGUETA
Revista Chilena de Historia Natural, 61(2): 145-271, 1988
(diciembre). Publicación de la Sociedad de Biología de
Chile.
En este nuevo número de esta prestigiosa Revista, se en-
cuentran dos aportes entomológicos; el primero de ellos
relativo a competencia entre dos especies de Drosophila en
Venezuela, por los autores M. Benado y C. Montero. El
segundo se refiere a un análisis biogeográfico de los Cossi-
dae (Lepidoptera) del extremo Sur de Sudámerica, del
cual es autora P. Gentili y es a la vez un complemento de
un trabajo de revisión taxonómica en el mismo grupo.
M. ELGUETA
Acta Entomológica Chilena, volumen 15, 337 p., 1989
(junio). Publicación del Instituto de Entomología, Univer-
sidad Metropolitana de Ciencias de la Educación, Casilla
147, Santiago.
Este volumen está dedicado al centenario del Instituto
Pedagógico y se incluyen en él 17 artículos, 9 notas cientí-
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 99-101
ficas, Catálogo de Tipos, Crónica y otros. Se destaca por su
utilidad el Segundo Suplemento al Catálogo de los hime-
nópteros calcidoídeos neotropicales de L. De Santis, la
revisión de los Groteini (Hymenoptera: Ichneumonidae)
de Chile por C.C. Porter, descripciones de un nuevo géne-
ro (Coleoptera: Cleridae), nuevas especies (Coleoptera:
Cleridae; Hymenoptera: Anthophoridae e Ichneumoni-
dae), nuevas citas para Chile (Hymenoptera y Diptera) y
Argentina (Diptera), además de nuevas combinaciones
(Hymenoptera: Chalcidoidea). Cabe destacar también,
atendiendo a lo recomendado por la Comisión Interna-
cional de Nomenclatura Zoológica, el catálogo de los Ti-
pos de Insecta depositados en el Instituto de Entomología
de la UMCE.
M. ELGUETA
Brooks, R.W. 1988. Systematics and phylogeny of the
Anthophorine bees (Hymenoptera: Anthophoridae: Ant-
hophorini). The University of Kansas Science Bulletin,
53(9): 436-575.
El autor efectúa un reordenamiento supraespecífico de
los representantes de la tribu Anthophorini, proponiendo
nuevas categorías subgenéricas para diversas agrupacio-
nes de especies. En lo relativo a especies presentes en
Chile, éstas son ubicadas en el subgénero Mystacanthopho-
ra. Anthopora tricincta Friese, 1925 es considerada por el
autor como sinónimo de A. arequipensis Bréthes, 1920; de
acuerdo a este aporte, las especies presentes en Chile son:
A. andicola Schrottky, A. arequipensis Bréthes, A. incerta
Spinola y A. paranensis Holmberg.
M. ELGUETA
BurckHarDrT, D. 8c P. LauTERER. 1989. Systematics and
biology of the Rhinocolinae (Homoptera: Psylloidea).
Journal of Natural History, 23: 643-712.
Los autores basados en un análisis cladístico, redefinen la
composición de la subfamilia Rhinocolinae de Psyllidae,
entregando la información conocida relativa a cada espe-
cie en cuanto a plantas huéspedes y distribución geográfi-
ca. En páginas 651 a 656 entregan claves para el reconoci-
miento de adultos y también para larvas y huevos, en los
casos en que dichos estadios son conocidos. Para Chile
describen una nueva especie, Taynaris acuticauda, la cual se
encuentra asociada a Schinus (Anacardiaceae); no se tie-
nen antecedentes biológicos de las dos especies de Taynaris
que se encuentran en nuestro país.
M. ELGUETA
CLaRKk, W.E. £ H.R. Burke. 1988. Revision of the ornatus
species group of the genus Anthonomus Germar (Coleopte-
100 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
ra: Curculionidae). Proceedings of the Entomological So-
ciety of Washington, 91(1): 88-111.
En este aporte se efectúa un detallado estudio de los
representantes de este grupo de especies del género Ant-
honomus; los huéspedes conocidos son plantas del género
Berberis (Berberidaceae). A las dos especies conocidas pre-
viamente de este grupo, restringido en su distribución al
cono Sur de América (Chile y Argentina), se agregan 5
nuevas especies: A. blanchardi Clark, A. kuscheli Clark, A.
araucanus Clark, A. chilicola Clark y A. berberidis Clark. Los
autores describen la larva y pupa de A. kuschel: (obtenidas
de botones florales de Berberis darwini) y de A. ornatus
Blanchard (obtenidas de botones florales de B. buxifolia);
presentan además fotografías de especies (aspecto gene-
ral y estructuras morfológicas) y una clave de fácil uso
para el reconocimiento de ellas, para finalmente propo-
ner un árbol filogenético de este grupo de especies.
M. ELGUETA
EspañoL, F. £e J. Comas. 1988. El género Leptanobium nov.
y la posición por él ocupada en la subfamilia Anobiinae
(Col. Anobiidae). Publicaciones del Departamento de
Zoología, Universidad de Barcelona, Facultad de Biolo-
gía, 14: 67-73.
Los autores describen un nuevo género y especie de Ano-
biinae para Chile (Atacama), Leptanobium australe, basados
en un ejemplar macho. Se define su posición dentro del
conjunto de géneros de la subfamilia, relacionándolo con
elementos neárticos y australianos.
M. ELGUETA
JurzitTza, G. 1989. Versuch einer zuzammenfassung un-
GoxzÁLez, R.H. 1989. Insectos y ácaros de importancia
agrícola y cuarentenaria en Chile, 310 pp. Impresora
Ograma S.A., Santiago.
La obra consta de cuatro capítulos precedidos por un
prólogo. El primer capítulo trata del concepto de plaga
agrícola, el cual necesariamente debe ir asociado a un
daño económico, y luego continúa con factores que inci-
den en el establecimiento de plagas, el origen de las plagas
en Chile, riesgos desde países limítrofes, e intercepción e
ingreso de organismos exóticos. El segundo capítulo se
refiere a plagas cuarentenarias, cuarentena interna y ex-
terna, aspectos taxonómicos, errores de identificación y
serer kenntnisse úber die Odonatenfauna Chiles. Societas
Internationalis Odonatologica, Rapid Communications
(Supplements), N? 9, 32 p.
El autor nos entrega una recopilación de la información
conocida acerca de las especies de Odonata citadas para
Chile; además, y como fruto de su experiencia personal de
terreno en nuestro país, entrega antecedentes de períodos
de vuelo, ecología y etiología de algunas especies.
Se considera como cierta la presencia en Chile de 46
especies, aun cuando en un caso expresa sus dudas; para
otras 7 especies (incluida Aeshna bonariensis), el autor esti-
ma que los registros previos necesitan ser confirmados. En
la última parte de este trabajo, entrega la información
bibliográfica acerca de las 10 larvas conocidas de odonatos
chilenos. Sin duda es un aporte de consulta obligada para
los interesados en el grupo, debido a la extensa recopila-
ción de antecedentes.
M. ELGUETA
Ro1G A., A. 1989. A revision of the bee genus Doeringrella
(Hymenoptera, Anthophoridae, Nomadinae). The Uni-
versity of Kansas Science Bulletin, 53(10): 576-621.
El autor efectúa una revisión taxonómica de este intere-
sante género de abejas cleptoparásitas, entregando nue-
vas sinonimias y claves para el reconocimiento de las espe-
cies (machos y hembras) y realizando además un análisis
filogenético; llama la atención el escaso conocimiento de la
biología de este grupo de abejas neotropicales. Para Chile
cita a D. gay: (Spinola) y D. gigas (Spinola); ambas especies
han sido listadas previamente (véase Toro, H. 1986. Acta
Entomológica Chilena, 13: 121-132).
M. ELGUETA
especies importantes no presentes en Chile. El tercer capí-
tulo ocupa 244 páginas y en él se incluye información
detallada de familias y especies de 12 órdenes. En el
cuarto capítulo se presenta un listado de las principales
plagas por cultivo hospedante. El texto termina con un
“abstract”, glosario, 164 referencias bibliográficas y un
índice de nombres científicos de las plagas.
El libro tiene alta calidad de impresión y está generosa-
mente ilustrado con 261 figuras. Estas en realidad in-
cluyen alrededor de 360 gráficos: 199 fotografías en colo-
res, 104 dibujos y 57 fotografías en blanco y negro (algu-
nas de microscopía electrónica).
En el Capítulo 1 se enfatiza que son plagas aquellas
Comentarios Bibliográficos 101
A AAA. — _ _ __ __ __ _ A
especies que efectivamente pueden causar daño económi-
co. Para ello el autor reconoce plagas primarias, secunda-
rias y ocasionales, según la importancia de las mismas,
indicando que las plagas cuarentenarias son de difícil
caracterización. Una opción pudo ser la clasificación pro-
puesta por la Academia Nacional de Ciencias de los Esta-
dos Unidos de América en 1969, que las agrupa en plagas
claves (frecuentes y destructivas), ocasionales (esporádica-
mente destructivas) y potenciales (normalmente en nive-
les subeconómicos). Esta permite considerar como claves
a las plagas cuarentenarias en productos destinados a la
exportación, más por las pérdidas que ocasionan que por
el daño directo al producto. Las mismas plagas pueden ser
calificadas como claves, ocasionales o potenciales si el des-
tino del producto fuese otro.
Al tratar las plagas cuarentenarias en el Capítulo 2, el
autor comunica su rica experiencia en el tema, las situacio-
nes problemáticas que ha vivido el país e invita a un
análisis de ellas.
El Capítulo 3 constituye el grueso del libro y en él se
proporcionan características, aspectos biológicos e impor-
tancia para los órdenes y familias. A nivel de especie se
indican hospedantes, distribución en el país, importancia
económica, caracteres morfológicos que la identifican, y
otras consideraciones pertinentes. No se abordan estrate-
gias de manejo de plagas. En un texto que brinda tantos
detalles, no extraña que se hayan colado algunos errores,
mayoritariamente tipográficos. Con seguridad el autor se
ha percatado de ellos y procederá a enmendarlos con una
¡EerdejErnratad
El listado de cultivos hospedantes con las principales
especies plagas que las infestan (Capítulo 4) es una útil
herramienta para ubicar rápidamente los problemas más
frecuentes. Igualmente útil es la explicación de 196 térmi-
nos que vienen en el glosario, especialmente para el lector
no familiarizado con el lenguaje científico y especializado
de la Entomología.
Sin lugar a dudas que se trata de una obra llamada a
tener un positivo impacto no tan sólo en medios universl-
tarios y profesionales relacionados con el agro, sino tam-
bién en entomólogos especializados en otros campos y
público general que se siente atraído hacia este grupo de
animales. De hecho, ya se está constituyendo en lectura
obligada para los primeros, dado que les facilita el desem-
peño de las funciones que les son propias; así como tam-
bién ha despertado alto interés entre otros lectores. Es
probable que entre los entomólogos se presenten diferen-
cias de opiniones. Esto, debidamente ponderado, permite
y hasta estimula el desarrollo de la ciencia. En todo caso, el
autor ha ofrecido una excelente base sobre la cual conti-
nuar construyendo.
Jarme U. APABLAZA H.
Facultad de Agronomía
Pontificia Universidad Católica de Chile
NOTICIAS
X CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLOGIA
Entre los días 5 y 7 de diciembre de 1988, investigadores y
alumnos de 16 instituciones nacionales, tuvieron la opor-
tunidad de compartir y establecer contactos con sus simi-
lares de distintas áreas, en el marco del X Congreso Nacio-
nal de Entomología; en esta ocasión se llevó a efecto en la
Estación Experimental La Platina del Instituto de Investi-
gaciones Agropecuarias, en Santiago. Como es ya habitual
en estos congresos organizados por la Sociedad, socios y
no socios pudieron disponer del foro adecuado para ex-
poner los resultados de más de 50 investigaciones origina-
les, generadas a lo largo del país entre La Serena y Val-
divia.
XI CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLOGIA
En la sede de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la
Universidad de la Frontera, en Temuco, se realizó entre el
15 y 17 de noviembre de 1989, el XI Congreso Nacional
de Entomología, con la presencia de entomólogos de Ari-
ca a Osorno; en este Congreso se expusieron los resulta-
dos de cerca de 30 trabajos originales, de investigadores
provenientes de 18 instituciones nacionales. En el acto
inaugural del día 15, se le rindió un merecido homenaje a
nuestro Consocio Prof. GILBERTO MONTERO O., por su
dilatada permanencia activa e interés en nuestra Socie-
dad; el Prof. Montero ingresó a la Sociedad el 9 de sep-
tiembre de 1923.
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 102
SYSTEMATICS AND BIOGEOGRAPHY OF THE
AUSTRAL BIOTA. Ninth Meeting of the Willi Hennig
Society
The ninth meeting of the Willi Hennig Society will take
place in Canberra, Australia, 24-27 August 1990. The
invited and contributed papers will be a mix of theory,
methodology and practice with the special theme of the
systematics and historical biogeography of the Austral
Biota. Sessions planned include:
1. Molecular biology and systematics (W. Wheeler, ].
West).
2. The use of phylogenetic information in ecological and
evolutionary studies (D. Faith).
3. Austral flora and fauna: systematics and evolution (M.
Crisp, R. Raven).
4. Austral biogeography (P. Lagides, C. Humphries).
5. Coevolution of plant and animal groups (R.T.-
O'Grady).
6. Phylogenetic computing software (R.A. Pimental, P.
Weston).
7. Poster session (P. Cranston).
Excursions to eastern New South Wales and Queensland
are planned. For suggestions, questions and preliminary
registration forms for the meeting, please write to Dr.
Ebbe S. Nielsen, Division of Entomology, CSIRO, GPO
Box 1700, Canberra, ACT 2601, Australia.
OBITUARIO
Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 103-107
HIPPOLYTE JANVIER (HERMANO CLAUDE JOSEPH)
MARÍA ETCHEVERRY
Hippolyte Janvier nació el 6 de marzo de
1892 en Lalleu, cerca de Rennes, Bretagne
(Francia), y falleció a los 94 años de edad, el 14
de septiembre de 1986 en Ville de Saint
Trojan Les Bains (Francia); dos meses des-
pués de la muerte de Stephanette Chabannes,
su tercera esposa.
Su hijo, el doctor Daniel Janvier, hijo de
Anne-Marie Choffat, la segunda esposa del
Dr. Janvier, me ha informado en su carta de
17 de septiembre de 1988 que “según su vo-
luntad, yo he entregado su colección de insec-
tos, como también sus diversos manuscritos y
su biblioteca al Museo Nacional de Historia
Natural de París”.
El Dr. Casevitz-Weulersse de la sección en-
tomológica de dicho museo dice: “este conjun-
to está formado principalmente por himenóp-
teros aculeatos paleárticos y una gran cantl-
dad de nidos y otros documentos biológicos
que demandará un gran trabajo ordenarlos
antes que se pueda estimar su real impor-
tancia”.
Janvier hizo sus estudios preparatorios pa-
ra el profesorado en las escuelas especiales de
la congregación de las Escuelas Cristianas en
Irún (España), Burdeos (Francia) y Lembecq-
Lezhal (Bélgica) que le dieron una sólida for-
mación literaria y científica. Su congregación
lo destina a Chile adonde llega en 1914. Du-
rante la guerra de 1914 a 1918, por decisión
del Ministro Plenipotenciario de Francia man-
tiene su puesto.
En Chile se desempeña como profesor de
Ciencias físicas, químicas y naturales. Enseñó
sucesivamente en el Colegio de La Salle de
Santiago, desde 1914 a 1917; en el Instituto
San Juan Bautista de La Salle de Nuñoa desde
1917 a 1924; en la Escuela Normal del Arzo-
bispado de Santiago desde 1924 a 1926; y en
Temuco desde 1926 a 1932. En este caso no he
podido asegurar el nombre del colegio ya que
Porter en 1929 dice “Instituto San José de
Temuco”; en la obra “Bibliografía Eclesiástica
chilena” de 1959 “Instituto San Juan de Te-
muco” y en el currículum que Janvier había
preparado por petición mía dice “College
Francais de Temuco”. En la contratapa del
tomo 13 (1930) del Boletín del Museo Nacio-
nal se lee “Personal honorario: Hno. Claude
Joseph, colaborador científico”.
Desde 1933 a 1939 se desempeña como
profesor de Ciencias físicas y naturales en la
Escuela San Nicolás de Issy, cerca de París.
Desde el inicio de la Segunda Guerra Mundial
y hasta 1948 estuvo en el ejército de donde se
retiró y fue contratado, a principio de 1949,
para trabajar en el laboratorio de entomología
del Departamento de.Agricultura de Estados
Unidos con sede primero en Reuill-Mal-
maison y después en Nanterre, ambas ubica-
das en el área de París. En esta institución
trabajó hasta el 30 de abril de 1964, fecha en
que jubiló. En este laboratorio trabajó, funda-
104 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
mentalmente, en los parásitos del abejorro eu-
ropeo, gorgojo de la alfalfa y del calcídido de la
semilla del trébol. Después de jubilado y por
algunos años inició estudios sobre control bio-
lógico en su propiedad de cerca de 20 hectá-
reas en Bazin, en la región de Toulouse. El
trató de usar insectos benéficos en lugar de
insecticidas en el control de insectos dañinos a
los frutales, legumbres, forrajeras y verduras.
Janvier, en 1933, presenta su tesis a la Fa-
cultad de Ciencias de la Universidad de París
para obtener el grado de Doctor; el tema desa-
rrollado corresponde a “Etude biologique de
quelques Hyménoptéres du Chili”, la comi-
sión examinadora fue presidida por el Dr. E.
Rabaud y los examinadores fueron los docto-
res F. Picard y J. Millot. En 1958, el Dr. Harvey
L. Sweetman en su obra “Los fundamentos del
control biológico” hace referencia a este tra-
bajo varias veces. En 1967, en Publicaciones
del Centro de Estudios Entomológicos de la
Universidad de Chile, se publica la traducción
completa y los dibujos de esta investigación sin
saber que era la tesis con la cual se doctoró.
Esta traducción fue realizada por don Isaac
Eldestein, Director del Departamento de
Francés de la Facultad de Filosofía y Educa-
ción de la Universidad de Chile, Sara Camus
alumna del mismo departamento y María Et-
cheverry, Directora del Centro de Estudios
entomológicos.
Durante su estadía en Chile estudia la flora
y fauna como, asimismo, la vida y costumbres
del pueblo araucano. Sus investigaciones se
publican en Chile en las: Revista Chilena de
Historia Natural, Anales de la Universidad de
Chile, Anales de Zoología Aplicada, Boletín
del Museo y Revista Universitaria; y en Fran-
cia en Annales des Sciences Naturelles. De
regreso en Francia se dedica especialmente a
los himenópteros aculeatos paleárticos y pu-
blica sus estudios en: Annales des Sciences
Naturelles, Journal of Economic Entomology,
Cahiers de naturalistes, Annales de la Société
entomologique de France, L'Entomologiste y
Graellsia. Desde 1977 publica privadamente
en “policopia” trabajos sobre el comporta-
miento de los Crabronidos, Colletidae y larvas
de himenópteros solitarios, obras realmente
escasas. En un listado que prepara a petición
mía, anota “80 trabajos desde 1919 a 1979 con
3.676 páginas y 1.634 figuras originales”.
En 1929 fue laureado con el “Prix Alcides
D'Orbigny” el que fue otorgado por la Société
entomologique de France por el conjunto de
sus estudios originales acerca de las costum-
bres de los insectos chilenos. El mismo año,
recibe el premio HIRN de la Academia de
Ciencias por sus investigaciones biológicas so-
bre un peripato de Chile. En 1930 fue conde-
corado con las “Palmas Académicas”. Tam-
bién fue distinguido por la Universidad Cató-
lica de Chile como Doctor Honoris Causa.
Desde 1923, el gobierno de Francia le asig-
na una suma anual de tres mil francos para sus
investigaciones en Chile a través de la Acade-
mia de Ciencias y de la “Caisse de Recherches
scientifiques”. En 1925, el gobierno de Chile le
confía la misión de estudiar los bosques vírge-
nes de La Araucanía. Desde 1926 a 1932 reali-
za estudios etnográficos entre los araucanos.
En 1927, la Commonwealth le encarga efec-
tuar investigaciones sobre los parásitos de
Acaena e introducir en Nueva Zelanda los An-
tholcus varinervis que destruyen las plantas
perjudiciales a las ovejas y a la industria de la
lana.
En la sesión del 27 de diciembre de 1931 de
la Academia Chilena de Ciencias Naturales, el
presidente informa “que Claude Joseph va a
ausentarse de Chile en gira científica y espera
que la Academia le otorgue credenciales de
recomendación y que sea el portavoz de un
saludo fraternal de esta Academia a todos los
centros científicos que visite. Petición que fue
acordada”. En 1932 realiza este viaje de estu-
dios al desierto de Atacama, a la alta planicie
andina, a los valles de Bolivia y del Sur del
Perú. En la sesión del 26 de junio de 1932 se
lee una comunicación de Claude Joseph sobre
este viaje y que dice: “Estuvo una semana en
Calama estudiando himenópteros, en Quilla-
gua hizo excavaciones de cementerios indíge-
nas; estuvo 24 días en Cochabamba en investi-
gaciones entomológicas y etnográficas, dio al-
gunas conferencias; 23 días anduvo por La
Paz, Yungas y Tiahuanaco dando 7 conferen-
cias, visitando las colecciones de Posnanski,
Biúcke y Diez Medina. En La Paz estudia a
4.200 metros la nidificación de himenópteros
en condiciones muy especiales. Observa hor-
migas podadoras, los parásitos de la coca y el
café, los tejidos aimarás y quichuas. Viaja al
Cuzco donde visita ruinas, asombrándose del
Obituario
ajuste de piedras sin cemento ni cal. Entre
grietas de las ruinas encontró especies de hi-
menópteros que allí anidan. Viaja a Arequipa
donde da una conferencia y en una semana
estudia algo de la fauna entomológica. En este
viaje logra cerca de 200 especies de himenóp-
teros, de las cuales a 84 les ha estudiado las
costumbres”.
El Dr. Janvier, durante su estadía en Chile,
pertenece a casi todas las sociedades científicas
que existían en esa época y de algunas llega a
ser miembro fundador como es el caso de la
Sociedad Entomológica de Chile (1922) y de la
Academia Chilena de Ciencias Naturales en
1926, y es socio correspondiente de la Socie-
dad Chilena de Historia Natural en 1926.
El material recolectado en Chile fue envia-
do a diferentes instituciones como: Museo del
Instituto de La Salle de Nuñoa, los Museos
Nacionales de Historia Natural de Santiago,
París y Washington, el Instituto Alemán de
entomología de Berlín, el Museo indígena de
Nueva York, el Museo del Hombre de París y
el Instituto Cathron de Nelson.
En la sesión del 28 de mayo de 1933 de la
Academia Chilena de Ciencias Naturales se
lee una información enviada desde Francia
- que dice: “...que había trabajado en el Museo
de París, en el arreglo de los materiales bioló-
gicos enviados desde Chile años atrás, que-
dando dicha colección, en cuanto a documen-
tos biológicos, como la más completa hoy día y
que permite darse cuenta de los maravillosos
instintos de los insectos. Durante un mes estu-
vo trabajando también en el Palacio del Traca-
dero en la colección de objetos etnográficos de
Chile, que será pronto una de las mejores del
museo...”. Este es el último dato oficial que se
encuentra de él en Chile.
El Dr. Hippolyte Janvier firma sus trabajos
en la siguiente forma: H.E.C. que significa
Hermanos de las Escuelas Cristianas, desde
1919 a 1920; Reverendo Hermano Claude Jo-
105
seph o Frere Claude Joseph desde 1921 a
1934; e Hippolyte Janvier desde 1928. La se-
gunda denominación tiene toda clase de abre-
viaciones de parte de los editores de las revis-
tas en las cuales publica, y de variaciones de
parte de los investigadores que lo colocan en
sus bibliografías y estudios. En bibliografías
entomológicas se encuentra citado como:
Claude Joseph, F.; Joseph Claude. En la Re-
vista Universitaria de 1980, en un trabajo so-
bre teñidos vegetales obtenidos de plantas tin-
tóreas aparece en la siguiente forma: Claude
Joseph H., Joseph H. Claude y Claude Joseph.
AGRADECIMIENTOS
La autora desea agradecer a las siguientes per-
sonas que han hecho posible la realización y
publicación de este trabajo:
Dr. Arnold Menke, Research entomologist del
Systematic entomology laboratory, USDA.
Monsieur Ph. Caviglioli, Le Maire (alcalde) de
Ville de Saint-Trojan-Les Baines, France.
Docteur Daniel Janvier, hijo de Hippolyte
Janvier, de Paris, France.
Doctor Ariel Camousseight de la sección ento-
mológica del Museo Nacional de Historia
Natural de Santiago, Chile.
Licenciado Mario Elgueta, Director responsa-
ble de la Revista Chilena de Entomología.
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ca central de la Pontificia Universidad Católica de
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106 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
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del celifrón (Sceliphron vindex Lep.). Anales de la
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2* serie, año 11, 4” trimestre, 1047-1143, 37 figs.
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1926 Observaciones entomolójicas. Los estexos de Chile
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1926 Observations entomologiques. Recherches biologi-
ques sur les hyménoptéres du Chili (Melliféres). An-
nales de Sciences Naturelles, Zoologie ser 10, vol. 9,
113-268, 97 fig. Existe traducción publicada (1960).
1926 El Tortrix del maqui. Revista universitaria 11(9):
786-794, 5 fig.
1927 La planta de la seda y los insectos. Revista universita-
ria 12(5): 548-555, 5 fig.
1927 Captura de insectos por las Uncinias. Revista univer-
sitaria 12(10): 1438-1441, 2 figs.
1927 Observaciones sobre el Chelanops coecus Gerv. Revis-
ta Chilena de Historia Natural 31: 53-56, 1 lám.
1927 Observaciones sobre el Peripatus blanviller Bl. Revista
Chilena de Historia Natural 31: 223-236, 4 figs.,
1 lám.
1928 Observaciones sobre el Phenes raptor Rambur. Revis-
ta Chilena de Historia Natural 32: 8-10, 1 lám.
1928 El Elachista rubella Blanchard. Revista Chilena de
Historia Natural 32: 140-143, 1 fig.
1928 El Chiasognathus grandti Steph. Revista universitaria
13(5-6): 529-535, 4 figs.
1928 Biología de los palotes (Bacteria spatulata Burm.).
Revista universitaria 13(8-9): 845-855, 6 figs.
1928 Tejidos araucanos. Revista universitaria 13(10):
978-1033, 40 figs.
1928 La platería araucana. Anales de la Universidad de
Chile, 2* serie, año IV, 1% trimestre, 117-158,
28 figs.
1928 Recherches biologiques sur les prédateurs du Chili.
Annales des sciences naturelles, zoologie 10(11): 67-
207, 69 fig. Existe traducción sin publicar.
1928 Observations sur un Peripatus du Chili. Annales des
sciences naturelles. Prix Hirn Academie Sciences.
1929 El Pinotus torulosus Eschsch. Revista Chilena de His-
toria Natural 33: 31-46, 8 figs.
1929 Notas sobre algunos helechos de Chile. Revista Chi-
lena de Historia Natural 33: 217-222, 1 lám.
1929 Plantas tintóreas de Araucanía. Revista Chilena de
Historia Natural 33: 364-374, 5 figs.
1929 Un parásito de las Acaena, el Antholcus varinervis
Spin. Revista universitaria 14(7): 708-726, 9 figs.
1929 Le repos nocturne chez quelques hyménoptéres du
Chili. Zoologischen Anzeiger, Berlin 82: 414-421,
2 figs.
1930 Polybetes ventrosus Nicolet. Revista Chilena de Histo-
ria Natural 34: 20-24, 1 lám.
1930 Un hermoso cántaro indígena. Revista Chilena de
Historia Natural 34: 76-80, 1 lám. b/n y 1 lám. col.
1930 Un lagarto vivíparo (Proctotretus chilensis Dum. et
Bibr.). Revista Chilena de Historia Natural 34: 282-
285, 1 fig.
1930 Los adornos araucanos en Lanalhue. Revista univer-
sitaria 15(5-6): 519-531, 10 figs.
1930 Insectos chilenos para Nueva Zelanda. Revista uni-
versitaria 15(8): 862-867, 3 figs.
1930 Las antigúedades de Araucanía. Revista universita-
ria 15(9): 1171-1235, 44 figs.
1930 Las ceremonias araucanas. Boletín del Museo Na-
cional 13: 73-95, 5 láms. con 10 figs.
1930 Recherches biologiques sur les prédateurs du Chili.
Pompilides et Euménides. Annales des sciences na-
turelles, zoologie 10(13): 235-354, 71 figs.
1931 Los Carabus de Temuco. Revista Chilena de Historia
Natural 35: 31-34, 1 fig.
1931 La vivienda araucana. Anales de la Universidad de
Chile, 3* serie, año 1, primer trimestre, 29-48,
16 láms. b/n con 21 figs.
1931 La vivienda araucana (continuación). Artefactos de
madera. Anales de la Universidad de Chile, 3* serie,
año l, segundo trimestre, 229-251, 23 lám. b/n con
55 figs.
1933 Etude biologique de quelques hyménoptéres du
Chili. Annales des sciences naturelles, zoologie' 10%
serie, 16(14-23): 209-356, 63 figs. Tesis doctoral.
Existe traducción publicada (1967).
1933 Costumbres araucanas. Revista universitaria 18(5-
6): 705-716, 4 figs.
Obituario
1934 Costumbres araucanas (conclusión). Revista univer-
sitaria 19(4): 517-528, 2 figs.
1935 Observations sur les Rhynoderma darwin:. Annales
des sciences naturelles 10(18): 197-204.
1942 Cycle vital des Hypoderma bovis. Reprographie pour
Cuirs et Peaux. 45 pp. y 20 figs.
1952 Mystérieuse Araucanie. Reprographie sur les ma-
puches. 320 pp.
1955 Le nid et la nidification chez quelques abeilles des
Andes tropicales. Annales des sciences naturelles,
zoologie 11(17): 311-349, 22 figs.
1955 Entomologie. Paralysis des pucerons par constric-
tion thoracique. Comptes rendus des séances de
lP'Académie des sciences 241: 608-609.
1955 Recherches sur les parasites d'Amphimallon. Bulletin
de la Société entomologique de France 60: 46.
1955 Capture des insectes par Vespula germanica. L'ento-
mologiste, 1 p.
1956 Observations sur deus prédateurs chasseurs d'Ho-
moptéres (Hym. Sphecidae). Annales de la Société
entomologique de France, Paris 124: 195-208,
6 figs.
1956 Entomologie. Anesthésie des larves d'Amphimallon
majalis Raz. par Tiphia morio F. Comptes rendus des
séances de l'Académie des sciences 242: 3124-3127.
Existe separata con nueva numeración.
1956 Entomologie. L'anesthésie des proies, 'oophagie et
la ponte chez Tiphia femorata F. Comptes rendus des
séances de l'Académie des sciences 243: 872-874.
Existe separata con nueva numeración.
1956 Hymenoptereous predators as biological control
agents. Journal of Economic Entomology 49(2):
202-205.
1956 Observations sur Tiphia morio. Annales de la Société
entomologique de France, 8 pp., 2 figs.
1956 (1957) Comportement de Tiphia morio F. dans la
destruction des Amphimallon majalis Raz (Hym. Tip-
hiidae). Annales de la Société entomologique de
France 125: 5-16, 4 figs.
1958 Recherches sur les parasites des Amphimallon (Col.
Scarabaeidae). Bulletin de la Société entomologique
de France, Paris 60: 46-47.
1960 Investigaciones biológicas sobre himenópteros de
Chile (Melíferos). Publicaciones del Centro de Estu-
dios Entomológicos, Universidad de Chile 1: 60 pp.,
18 láms. b/n. Traducción de María Etcheverry y
Agustín Valenzuela.
1960 Recherches sur les hyménoptéres nidifiants aphidi-
vores. Annales des sciences naturelles, zoologie 12*
série, 281-321, 15 figs.
1951 Les Pemphredons. Annales des sciences naturelles,
zoologie 3, N” 1, 52 pp., 14 figs.
1961 Recherches sur les hyménoptéres nidifiants aphidi-
vores. 111. Le genre Passaloecus (Shuchard). Annales
des sciences naturelles, zoologie, 12“ série, t. MI,
847-883, 20 figs.
1961 VII. Le genre Nitela (Latreille). Annales des sciences
naturelles, zoologie (12)4: 489-516, 2 figs.
1962 Recherches sur les hyménoptéres nidifiants aphidi-
vores. IV. La genre Diodontus. Annales des sciences
naturelles, zoologie, série 12, 4(3): 481-516.
107
1963 La mouche de la truffe (Helomyza tuberiperda Ronda-
ni). Bulletin de la Société entomologique de France
68: 140-147, 2 figs.
1965 Observations sur Tiphia morio F. (Hymenoptera Ti-
phiidae). Cahiers des naturalistes, Bulletin des natu-
ralistes parisiens, N.S. 21: 123-131, 3 figs, 1 tab.
1966 Observations sur Tiphia femorata F. (Hymenoptera
Tiphiidae). Cahiers des naturalistes, Bulletin des
naturalistes parisiens, N.S. 22(3): 49-56, 2 figs.
1967 Estudio biológico de algunos himenópteros de Chi-
le. Publicaciones del Centro de estudios entomológi-
cos, Universidad de Chile 9: 58 pp, 9 lám. b/n. Tra-
ducción de María Etcheverry, Isaac Eldestein y Sara
Camus.
1967 Le probléme des huitres. Syndicat ostréicole, 68 pp.,
30 figs.
1970 Apuntes sobre las Hylaeus F. 1793, de España (Hym.
Apidae). Graellsia, Revista de entomólogos ibéricos
ZN AI SES:
1972 Note sur les Hylaeus de lle d'Oleron, avec la des-
cription d'une espéce nouvelle (Hym. Apidae).
L'Entomologiste, revue d'amateurs 28(4-5): 107-
114, 1 fig.
1972 La nidificación de Hylaeus parvulus Janvier. L'Ento-
mologiste, revue d'amateurs 28(06): 179-189, 2 figs.
1974 Una colonia de Argogorytes hispanicus (Merc. 1906) en
Málaga (Hym. Sphecidae). Graellsia, Revista de en-
tomólogos ibéricos 27: 67-77, 2 figs.
1975 Un peripate du Chili chasseur de termites. L'Ento-
mologiste, revue d'amateurs 30: 63-68.
1975 Nidificación de Psenulus concolor (Dahlbom 1843)
(Hymenoptera) Graellsia, Revista de entomólogos
ibéricos 29: 117-142, 7 figs.
1976 Nidificación silvestre d'abeilles domestiques. L'En-
tomologiste, revue d'amateurs 31, 6 pp.
1977 Observations sur les Solierella compedita (Hym. Sphe-
cidae). L'Entomologiste 33(6): 233-247, 4 figs.
1977 Comportement des Crabroniens (Hymenoptera).
Livre premier. Reprographie de Poriginal. 280 pp.,
128 figs. First edition, 20 copies printed.
1977 Comportement des Crabioniens (Hymenoptera).
Livre second. Reprographie de l'original. 274 pp.,
119 figs. First edition, 20 copies printed.
1977 Comportamiento de Xylocopa violacea Linneo, 1758
(Hymenoptera). Graellsia, Revista de entomólogos
ibéricos 32: 193-214, 2 láms.
1978 Comportement hivernal d'Andrena cingulata E.
Cahiers des naturalistes, Bulletin des naturalistes
parisiens N.S., t. 33(1): 1-13, 6 figs. 2” trimestre.
1979 Espéce butineuses observées sur les Hedera helix.
L'Entomologist, 12 pp., 2 figs.
1979 Comportement d'Abeilles Colletidae. Reprographie
de Poriginal, 350 pp., 160 figs.
1979 Larves d'hyménoptéres nidifiants solitaires. Repro-
graphie de Poriginal, 320 pp., 180 figs.
1979 Observations hivernales d'hyménoptéres dans la pe-
ninsule Ibérique. Reprographie, 30 pp., 10 figs.
1979 Hippolyte Janvier. Hippolyte Janvier. Sphecos 1:
14-15 (october).
1982 Observations sur les Ampulex fasciata (Hym. Ampuli-
cidae). L'Entomologiste, revue d'amateurs 38(6):
230-237, 3 figs.
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Rev. Chilena Ent.
1989, 17: 109-112
LUCIANO ELLIOT CAMPOS STREET
(1927-1989)
Nació en Sáo Paulo, Brasil, el 24 de febrero de
1927, cuando su padre, Julio César Campos,
que se desempeñaba en el servicio diplomático
chileno, ejercía labores de cónsul en esa ciu-
dad. En una entrevista aparecida en Revista
del Campo del diario El Mercurio el 9 de febre-
ro de 1987 dijo: “Aunque nací en Brasil nunca
he tenido la oportunidad de regresar a ese
país”.
Realizó sus estudios secundarios en el
Grange School e ingresó a estudiar agronomía
en la Universidad de Chile en 1944. En mayo
de 1950 se titula de Ingeniero Agrónomo con
la memoria titulada “Levantamiento del plano
de suelos de la Colonia de Rinconada”.
Se especializa en Estados Unidos. En 1953-
1954 es becado por el Punto IV para estudiar
Entomología en la Universidad de California.
En 1957-1960 es becado por la Fundación
Rockefeller para realizar estudios conducen-
tes al Doctorado en Entomología en la Univer-
sidad de California, Davis. Obtiene su Ph.D.
con mención en Entomología y sus especiali-
dades menores en Fruticultura y Fitopatolo-
gía; su tesis se refiere a “The effect of temper-
ature and humidity on the weathering of pa-
rathion residues”.
Desempeñó diversas actividades en la Uni-
versidad de Chile, Ministerio de Agricultura,
sociedades científicas e instituciones privadas.
La Universidad de Chile le dio las posibilida-
des para realizar actividades docentes, admi-
nistrativas, de investigación y de extensión ya
que entró como alumno en 1944 y permaneció
en ella hasta el día de su muerte. En 1952 fue
nombrado ayudante de cátedra, y siguió su
carrera siendo jefe de trabajos, profesor inte-
rino, profesor titular, jefe interino, jefe del
departamento, coordinador de investigación,
director de escuela y decano de Facultad. To-
da esta actividad de más de 35 años, fue reco-
nocida por la Facultad de Ciencias Agronómi-
cas y Forestales en enero de 1987.
En el Ministerio de Agricultura trabajó des-
de 1951 y hasta 1960 como entomólogo espe-
cialista en control de plagas. En 1963 se de-
sempeñó como profesor de Entomología
Agrícola en la Escuela de Agronomía de la
Universidad de Concepción.
Desde 1955 y hasta 1985 se desempeña co-
mo organizador, coordinador y profesor de
diversos cursos relacionados con los insectos
como plagas, como controlarlos y las mejores
medidas fitosanitarias a tomar; todo en rela-
ción, especialmente, con frutales. Estos cursos
se realizaron en Arica, San Felipe, La Cruz,
Santiago, Rancagua, San Fernando, Curicó,
Chillán y Valdivia bajo el patrocinio de diver-
sas instituciones: Universidad de Chile, Cató-
lica, de Concepción, FAO, ICIRA, Ministerio
de Agricultura, Sociedad Nacional de Agri-
cultura, CODECIAGRO, etc.
Perteneció a diversas instituciones científi-
cas, tanto nacionales como extranjeras. Entre
estas últimas tenemos: Sociedad Peruana de
Entomología, Sociedad Argentina de Ento-
mología, Entomological Society of America,
Pacific Coast Entomological Society, Florida
Entomological Society, American Society of
Horticultural Science, Society of Sigma Xi.
Entre las chilenas: Sociedad Agronómica de
Chile, Colegio de Ingenieros Agrónomos
(A.G.), Sociedad Chilena de Entomología. In-
gresó a esta última en 1952 en calidad de socio
activo y fue elegido Presidente para el período
1972-1974. En noviembre de 1987, la Socie-
dad le confiere la calidad de Socio Honorario.
Desde 1962 participa —dentro y fuera del
país— en diversos congresos, reuniones y sim-
posios relacionados con entomología, fruticul-
tura y control de plagas. Desde 1965 realiza
una serie de visitas a instituciones extranjeras
para informarse de los adelantos científicos,
especialmente a USA (Washington, Michigan,
Florida, California), México y Argentina.
También asesora, en 1977, a los productores
de manzanas de Mendoza.
Luciano Campos fue muy distinguido con
diplomas y premios otorgados por las distin-
tas instituciones a las cuales perteneció. Entre
estos tenemos:
— la sociedad Agronómica de Chile, le otorga
en octubre de 1984 el Premio al Mérito
110 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
Agronómico, por su destacada labor en el
ambiente nacional;
—el Colegio de Ingenierios Agrónomos
(A.G.), el 18 de diciembre de 1986, le otor-
ga el premio anual Carlos E. Porter, por su
actuación profesional en la actividad cientí-
fica;
— la Facultad de Ciencias Agronómicas y Fo-
restales de la Universidad de Chile, en ene-
ro de 1987, lo premia en reconocimiento a
su destacada labor académica;
— la Sociedad Chilena de Entolomogía, en no-
viembre de 1987, le confiere la calidad de
Socio Honorario en atención a los méritos
docentes y científicos exhibidos durante su
fecunda y dilatada trayectoria en el campo
de la Entomología.
Su profesión de agrónomo le sirvió para tra-
bajar en su parronal “Ana María” en Colina
desde 1979.
En enero de 1985 se le descubrió una grave
enfermedad contra la cual luchó hasta los últi-
mos días del año 1988, falleciendo la mañana
del 1 de enero. Tuvo realmente temple para
enfrentar su enfermedad que duró cuatro
años. La autora estuvo en continuo contacto
telefónico con él hasta el 10 de diciembre de
1988, al principio a petición de su gran amigo
Dr. Arnold S. Menke del U.S. Department of
Agriculture, quien siempre se alegraba cuan-
do yo recibía noticias de él y le trasmitía sus
cariñosos saludos. Le sobreviven sus hijos:
Bernardita, Luciano, María Alicia y Ana
María.
Su actividad profesional le dio la posibili-
dad de publicar, en diferentes revistas chile-
nas y extranjeras, más de 60 trabajos que a
continuación damos a conocer:
PUBLICACIONES
1952 Acción de insecticidas sistémicos sobre estados larva-
rios de la conchuela negra del olivo (Saissetia oleae
Bern.). Raúl Cortés y Luciano Campos. Agricultura
Técnica, Chile, 12(1): 5-10, 1 fig. 1 tab.
1953 Notas sobre taquínidos chilenos 1 (Diptera, Tachini-
dae). Agricultura Técnica, Chile, 13(1): 24-31.
1953 Plagas entomológicas de la agricultura en Chile. De-
partamento de Sanidad Vegetal del Ministerio de
Agricultura de Chile. Cartilla N” 49, 16 pp., (junio).
1954 Uso de pesticidas. Simiente, 24(1-4): 87-88.
1955 Pérdidas causadas en la agricultura por insectos da-
ñinos. R. Cortés, L. Caltagirone y L. Campos. Bole-
tín Plan Chillán, Chile, 1(5): 8-9.
1955 Cien años de entomología económica en Estados
Unidos. Revista Chilena de Entomología, 4: 313-
SIE
1956 Notas acarológicas, 1. Descripción y clave para reco-
nocer las especies comunes en frutales de hoja cadu-
ca. Agricultura Técnica, Chile, 16(2): 101-106.
1958 Problemas en la aplicación de pesticidas. Agricultu-
ra y Ganadería, Chile, 4(14): 16-18.
1961 A review of the genus Omalus Panzer in North
America (Hymenoptera, Chrysidae), R.M. Bohart
and L. Campos. Annals of the Entomological Society
of America, 53: 235-250.
1962 The Thysanoptera of Chile. Publicaciones del Cen-
tro de Estudios Entomológicos, 4: 19-26, 2 lám. con
4 figs., S.F. Bailey and L.E. Campos.
1965 The Thysanoptera of Chile. S.F. Bailey and L.E.
Campos. The Pan Pacific Entomologist, 41: 101-
106.
1967 Proyecto. Estudio entomológico del tamarugo. Sub-
proyecto. Insectos asociados con el tamarugo en la
Pampa del Tamarugal, en Universidad de Chile,
Facultad de Agronomía, Departamento de Biología, ..
Memoria Anual, pp. 80-84.
1970 Relación insectos-malezas. En Sociedad Chilena de
Control de Malezas. Mesa redonda de control de
malezas en huertos frutales. INIA, pp. 23-26.
1970 Taquínidos de Tarapacá. Raúl Cortés y Luciano
Campos. Anales de la Universidad del Norte, 6:
4-104, 16 tig.
1971 Biocenosis del tamarugo (Prosopis tamarugo Phil.). L.
Campos y C. Klein. Resúmenes de los trabajos pre-
sentados al Primer Congreso Latinoamericano de
Entomología, Cusco, Perú, 12-18 abril 1971,
pp. 155-156.
1972 Toxicidad de cuatro insecticidas contra Spodoptera
frugiperda (J.E. Smith) y Prodenia errdana (Gram.)
del valle de Lluta, Chile. Revista peruana de ento-
mología, 15(2): 261-262, 2 fig. (junio).
1973 Nota editorial. La palabra del Presidente. Revista
Chilena de Entomología, Edición del cincuentena-
rio 1922-11973,7:19210:
1973 La sarna del manzano, su biología y control. L.E.
Campos y B. Latorre. CEDITEC SAG Boletín Téc-
nico N* 59.
1973 Los insectos de la isla de Pascua. (Resultados de una
prospección entomológica). Luciano Campos y Luis
E. Peña. Revista Chilena de Entomología, Edición
del cincuentenario 1922-1973, 7: 217-229.
1973 Catálogo de las plagas agrícolas de Chile. R.H. Gon-
zález, P. Arretz y L.E. Campos. Publicación de Cien-
cias Agrícolas, U. de Chile, 2: 68 pp., 1 pág f/n, ve (fe
de erratas).
1974 Taquínidos de Tarapacá y Antofagasta. Addenda 1.
(Diptera, Tachinidae). R. Cortés y L.E. Campos.
Idesia, Universidad del Norte, Arica, 3: 111-125.
1975 Insects, men and environment in Chile. Revista Chi-
lena de Entomología, 8: 6-10 (1974).
1975 Discurso pronunciado por el Dr. Luciano Campos
S., a propósito de la celebración del cincuentenario
Obituario
111
de la Sociedad. Revista Chilena de Entomología, 8:
152-156 (1974).
1975 El pulgón de la raíz del peral (Eriosoma pyricola Baker
y Davidson). L.E. Campos y R. Charlín. Investigacio-
nes agrícolas, U. de Chile, 1(2): 128-130, 3 fig.
1976 Introducción a Chile de Mataseiulus occidentalis (Nes-
bitt) (Acarina, Phytoseiidae). L. Campos, L. Lambo-
rot, M.A. Guerrero. Investigación agrícola, U. de
Chile, 2(1): 51-52.
1976 Resistencia de P. ulmi Koch y T. urticae (Koch) a
dicofol, carbophenotion y chlordimeform. L. Cam-
pos, A. Nordenflycht y R. Charlín. Investigación
agrícola, U. de Chile, 2(3): 115-119, 2 tab.
1976 Los pulgones de los cereales y su control. Recomen-
daciones para la temporada 1976-1977. Luciano
Campos y Raimundo Charlín. Boletín Agrícola
Shell, 36(3): 1-11, 3 fig., 3 tab, julio-septiembre.
1976 Los pulgones de los cereales. L.E. Campos, R. Char-
lín, L. Lamborot, M.A. Guerrero. El Campesino, 4:
38-43, 5 fig.
1976 Introducción a Chile de Metaserulus occidentalis (Nes-
bitt) (Acarina, Phytoselidae). L.E. Campos, L. Lam-
borot y M.A. Guerrero. Investigaciones agrícolas,
Chile, 2(1): 51-52.
1977 Don Claudio Gay, zoólogo. Boletín del Museo Na-
cional de Historia Natural, Santiago, Chile, 35: 23-
30.
1977 Problemas de insectos y residuos de pesticidas en la
fruta. II simposio sobre manejo, calidad y fisiología
de postcosecha de frutas, San Felipe, junio de 1977.
Publicaciones misceláneas agrícolas, U. de Chile, 12:
38-44, 1 tab.
1977 Biocenosis del tamarugo (Prosopis tamarugo Philippi)
con especial referencia a los artrópodos fitófagos y
sus enemigos naturales. C. Klein Koch y L. Campos.
Zeitschrift fir angewandte entomologie, 85(1): 86-
108, 7 fig., 3 tab.
1978 Insecticidas para el control de capachito de la vid
(Naupactus xanthographus Germar). L.E. Campos y
H. Camacho. Simiente, 48(1-2): 20 (enero-junio).
1978 Efecto de las épocas de siembra de trigo y cebada y
su relación con la visita de áfidos y el VEAC. L.E.
Campos y N. Echeverría. Simiente, +8(1-2): 21
(enero-junio).
1978 Aplicación de etephon en vides. 1. Efecto del etileno
en el crecimiento de brotes y producción en uvas
moscatel rosada y cot. L.E. Campos, N. Echeverría y
L.A. Lizana. Investigaciones agrícolas, U. de Chile,
4(2): 55-58, 2 fig., 1 tab.
1978 Aplicación de etephon en vides. 11. Efecto del etile-
no en la producción de uva sultanina. L.E. Campos,
L.A. Lizana y N. Echeverría. Investigaciones agríco-
las, U. de Chile, 4(2): 59-62, 2 fig., 1 tab.
1978 Aplicación de etephon en vides. 111. Efecto del etile-
no en la colocación y maduración de uvas emperor y
ribier. L.A. Campos, L.A. Lizana y N. Echeverría.
Investigaciones agrícolas, U. de Chile, +(2): 63-67,5
tab.
1979 Clave de campo para identificar cinco especies de
áfidos (Homoptera, Aphididae) de los cereales. L.E.
Campos, M.A. Guerrero y L. Lamborot. Investiga-
ciones agrícolas, U. de Chile, 5(1): 33-37, 2 lám. col.,
con 5 fig.
1979 Protección contra áfidos en los diversos estados fe-
nológicos del trigo. K.S. George, L.E. Campos y N.
Echeverría. Investigaciones agrícolas, U. de Chile,
5(3): 101-104, 1 fig., 3 tab.
1979 Efecto de nueve insecticidas en el control de los
áfidos del trigo. L.E. Campos y N. Echeverría. Inves-
tigaciones agrícolas, U. de Chile, 5(3): 105-109, 3
tab.
1979 Efecto de la época de siembra y densidad poblacio-
nal de áfidos en rendimientos de trigo y cebada. N.
Echeverría y L.E. Campos. Investigaciones agríco-
las, U. de Chile, 5(3): 110-117, 2 fig., 5 tab.
1980 Entomofauna asociada al ecosistema Atriplex en la
zona árida de Chile. Resumen de trabajo presentado
al 3 Congreso Internacional de Zonas Aridas, La
Serena, enero 1980, pág. 132.
1981 Aspectos biológicos e importancia económica de la
arañita roja de la vid, Oligonychus mangrferus (R. y S.)
(Acarina, Tetranychidae). L.E. Campos y Luis Sazo.
Resúmenes de las XXXII Jornadas Agronómicas,
La Serena, octubre 5-9, 1981, pág. 51.
1981 El psílido del peral Psylla pyricola (Foerst.). Una nue-
va plaga de nuestra fruticultura. L.E. Campos y Luis
Sazo. Resúmenes de las XXXII Jornadas Agronómi-
cas, La Serena, octubre 5-9, 1981, pág. 52.
1981 Advertencia a los fruticultores. Presente en Chile
importante plaga del peral. L. Campos y L. Sazo.
Chile agrícola, 6(65): 392-393, 1 fig.
1981 Efectos de formulaciones comerciales de insectici-
das fosforados empleados sobre el ácaro predator
Amblysetus chilensis (Dosse). L. Campos, N. Echeve-
rría, L. Lamborot. Investigación agrícola, U. de Chi-
le, 7(1-2-3): 1-4.
1981 Plagas de las leguminosas de grano en el contexto
nacional y latinoamericano. 11 Seminario Legumi-
nosas de Grano, 28-29 de mayo de 1981, 1 p. s/n,
96-121, 8 tab.
1982 Control de arañitas en frutales. V Congreso Chileno
de la Manzana. Rancagua, 10, 11, 12 de noviembre
de 1981, en La Manzana, situación actual. L. Cam-
pos, L. Lamborot y M.A. Guerrero. Publicación téc-
nica, Sociedad Agronómica de Chile, 7: 103-106, 3
fig., 5 tab.
1982 Distribución y ciclo evolutivo del tortrícido enrolla-
dor de la vid, Proeulia auraria (Clarke). Agricultura
Técnica, Chile, 41(4): 249-256, 12 fig., 2 tab. L.E.
Campos, M.A. Faccin, N. Echeverría y L. Sazo.
1982 Biología y control de la conchuela café de la vid.
Parthenolecanium corni Bouche. L.E. Campos, L. Sa-
z0. El Campesino, 117(8): 8-11.
1982 Toxicidad de cuatro insecticidas contra Spodoptera
frugiperda (J.E. Smith) y Prodenia eridania (Cram.) del
valle de Lluta, Chile. Idesia, 6: 13-19, 2 fig., 2 tab.
1983 Plagas de la vid en Chile y su control L. Campos, L.
Sazo. Serie Antumapu, U. de Chile, 9: 152 pp.,
22 fig., 4 lám. col.
1984 Las trampas de feromonas en el control moderno de
insectos. L. Sazo y L. Campos. Aconex, 6: 23-27, 1
fig., 4 tab.
1984 Muestreo de arañitas fitófagas en huertos de manza-
112 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
no. L. Sazo y L. Campos. Aconex, $: 29-31, 1 fig., 1
fig. col., 2 tab.
1986 Reconocimiento, desarrollo y control de escama de
San José en Chile. L. Sazo y L. Campos. Aconex, 13:
15-21, 7 fig. col., 2 tab.
1986 El pulgón de la raíz del peral (Homoptera, Aphidi-
dae). L. Sazo y L. Campos. Aconex, 14: 15-17, 2 fig.,
3 fig. col., 1 tab.
1986 Biología y control de la conchuela café de la vid,
Parthenolecanium corn (Bouché). L. Sazo y L. Cam-
pos. El Campesino, 117(8): 9-11, 4 fig.
1987 Fenología de O. perniciosus (Comst.) en dos áreas
frutícolas de Chile.
I. Validación del modelo predictivo (pete) para
adopción de decisiones de control. C. Vial, L. Cam-
pos, L. Sazo y A. Rustom. Simiente, 57(1-2): 1-5, 2
fig., 1 tab.
II. Ciclo evolutivo y dinámica poblacional de machos
y ninfas móviles de O. perniciosus (Comst.). L. Cam-
pos, L. Sazo, C. Vial y A. Rustom. Simiente, 57(1-2):
6-11, 2 fig., 3 tab.
II. Contaminación química de machos adultos y
ninfas primaverales de Q. perniciosus (Comst.). L.
Sazo, C. Vial, A. Rustom y L. Campos. Simiente,
AM ota:
1987 Residuos de phosmet y etil-metil azinphos en tres
variedades de uva de mesa de exportación. L. Cam-
pos, P. Saini y L. Sazo. Simiente, 54(1-2): 33-36, 4
tab.
1987 La fumigación con bromuro de metilo y sus alterna-
tivas en fruta fresca de exportación. Antumapu (Re-
vista de extensión agropecuaria, Escuela de Agrono-
mía, Universidad de Chile), 1(1): 8-12, 3 fig., 3 tab.
1987 Insectos en nuevas variedades de peras de exporta-
ción (Pyrus spp.) en cultivos de peras rojas y asiáticas.
Publicaciones misceláneas agrícolas, 17: 75-85.
Algunos artículos publicados
en la REVISTA DEL CAMPO
del diario El Mercurio
1976 El manejo de plagas en frutales de hoja caduca.
Martes 19 de octubre, p. 34.
1976 Insectos dañinos para el durazno aparecen en pri-
mavera y verano. Las principales plagas y la manera
de enfrentarlas. Martes 23 de noviembre, p. 34, 1
fig.
1976 Cómo atacar insectos que dañan las producciones de
manzanas y peras. Martes 14 de diciembre, p. 37, 2
fig.
1977 Diversos insectos que atacan los parronales. Luciano
Campos y Raimundo Charlín. Martes 4 de enero,
p. 36, 1 fig. col.
1977 La escama de San José, amenaza constante para
exportaciones frutícolas. Martes 19 de abril, p. 37, 1
fig.
1977 Ensayos sobre insecticidas contra pulgones. L. Cam-
pos y R. Charlín. Martes 6 de diciembre, D. 40.
1977 Nueva plaga potencial de la fruticultura. L. Campos
y R. Charlín. Martes.
1978 Nueva plaga potencial de la fruticultura chilena ha
sido detectada en manzanas provenientes de la Ar-
gentina. Luciano Campos y Nelson Fuenzalida.
Martes 17 de octubre. D-4, 1 fig.
1983 Estrategia de control del burrito de la vid. Luciano
Campos y Luis Sazo. Sábado 5 de febrero, p. 5.
1983 Escama de San José. Plaga vigente en la fruticultura.
L. Campos y L. Sazo. Sábado 12 de marzo.
1983 Fruticultura: donde se hospedan las plagas. L. Sazo
y L. Campos. Sábado 2 de abril, p. 5, 2 fig.
1983 El “chanchito blanco de la vid”. Plaga en aumento en
uva de mesa. L. Campos y L. Sazo. Sábado 28 de
mayo.
1983 Uva de mesa: el trips en floración y precosecha.
Luciano Campos y Luis Sazo. Sábado 18 de junio,
Paid ZA es
1983 Parronales de uva de mesa: control invernal de pla-
gas. L. Sazo y L. Campos. Sábado 23 de julio, p. 7, 2
fig.
1984 La “eulia” o enrollador de la vid. 31 de diciembre.
1985 Trips de la flor y de los brotes. L. Campos y L. Sazo.
Lunes 20 de marzo pro ete
1985 Falsa arañita roja de la vid. Lunes 29 de abril, p. 5, 1
fig.
1988 Fumigación de fruta fresca con bromuro de metilo.
Lunes 11 de enero. Edición N” 600, A-10-11, 3 fig.,
3 tab.
Dra. María ETCHEVERRY
Obituario
113
THEODORE H. HUBBELL
Ha fallecido a la edad de 92 años en su casa de
Ann Arbor, Michigan, USA, en la tarde del
viernes 22 de septiembre de 1989, el Dr.
Theodore H. Hubbell.
Fue Director del Museo de Zoología de la
Universidad de Michigan durante muchos
años y tuvo la oportunidad de viajar por múlti-
ples lugares, incluyendo a Chile, en busca del
conocimiento en la Naturaleza de sus grupos
favoritos dentro de los Orthoptera.
En este país estuvo viajando durante algo
más de dos meses entre enero y marzo de
1963, en busca de Gryllacridiidae, consiguien-
do encontrar diversas especies hasta ese en-
tonces desconocidas. Estudió sus hábitos en
los bosques de Nahuelbuta, Chillán, Zapallar,
Tierra del Fuego, etc. Entusiasmado por co-
nocer más a fondo la distribución del grupo,
dejando Chile viajó por Perú, llegando hasta
Ecuador, retornando a su país a fines de
mayo.
Publicó numerosísimos trabajos, y en ellos
se palpa su gran conocimiento sobre la ma-
teria.
Su gran simpatía, amistad desinteresada y
agradable trato lo hizo ser considerado, en
quienes lo conocimos, como un gran amigo.
Su vasto conocimiento y su sencillez lo hizo ser
el gran profesor, por eso la pérdida de este
sabio-amigo es irreparable. Lo visitamos en su
trabajo en la Universidad, en su casa donde
nos atendiera su amable esposa Grace; viaja-
mos tanto juntos y mucho aprendimos de él,
porque todo su conocimiento lo entregaba ca-
riñosamente.
Luis E. PEÑA G.
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INSTRUCCIONES A LOS AUTORES
Las colaboraciones para la Revista Chilena de
Entomología deberán corresponder a investi-
gaciones originales sobre Entomología en
cualquiera de sus especialidades, aspectos o
relaciones, inéditas, con las referencias biblio-
gráficas o revisión de literatura necesarias pa-
ra fundamentar el nuevo aporte.
La recepción de trabajos será continua, pu-
blicándose en estricto orden de aceptación. Se
dejará expresa constancia de las fechas de re-
cepción y de aceptación definitiva de los ma-
nuscritos.
Los trabajos deberán estar escritos a máqui-
na, a doble espacio, en hoja tamaño carta, con
un margen de 2,5 cm por lado. Las contribu-
ciones no deberán exceder las 25 páginas me-
canografiadas, incluyendo Tablas y Figuras;
cada hoja se numerará correlativamente y lle-
vará el apellido de los autores. Los autores de
trabajos que utilicen impresoras para sus ori-
ginales, deberán poner especial atención en
cuanto a que el texto sea absolutamente legi-
ble. Deberá evitarse el uso de neologismos y de
abreviaturas no aceptadas internacional-
mente.
Los originales, incluyendo 2 copias, se de-
ben dirigir a:
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Revista Chilena de Entomología
Casilla 21132
Santiago (21) CHILE
Los trabajos redactados en español y portu-
gués incluirán un resumen en inglés, a conti-
nuación del resumen en español o portugués.
Todos aquellos trabajos escritos en inglés lle-
varán un resumen en español a continuación
del resumen en inglés.
Se sugiere que cada artículo científico cons-
te de las siguientes secciones:
. Resumen y Abstract
. Introducción
. Materiales y Métodos
. Resultados (y Discusión)
. Discusión
. Agradecimientos
. Literatura Citada
. Tablas y Figuras.
00 TO) OLA ON
Pudiéndose refundir Resultados y Discu-
sión. Indique mediante notas marginales en el
texto la localización preferida de Tablas y Fi-
guras.
Las llamadas a pie de página deberán indi-
carse mediante un número, con numeración
correlativa a lo largo del manuscrito.
Las menciones de autores en el texto debe-
rán ser hechas con letras minúsculas, ej.: Gon-
zález; los nombres de autores en la Literatura
Citada deberán ser escritos con mayúscula, ej.:
GONZALEZ. El término Bibliografía se reser-
va para aquellos casos en que se efectúa una
recopilación exhaustiva sobre un determina-
do tema.
Ejemplos de menciones de citas bibliográ-
ficas:
Frías L., D., 1986. Biología poblacional de
Rhagoletis nova (Schiner) (Diptera: Tephri-
tidae). Rev. Chilena Ent., 13: 75-84.
Toro, H. 8: F. Rojas, 1968. Dos nuevas espe-
cies de Isepeolus con clave para las especies
chilenas. Rev. Chilena Ent., 6: 55-60.
Grez, A.A.; J.A. SIMONETTI « J.H. IPINZA-
RecLa, 1986. Hábitos alimenticios de Cam-
ponotus morosus (Smith, 1858) (Hymenopte-
ra: Formicidae) en Chile Central. Rev. Chi-
lena Ent., 13: 51-54.
Note el uso de £e y que se resalta los nombres
científicos y el volumen de la revista. En el caso
de títulos que incluyan nombres genéricos o
específicos, deberá llevar entre paréntesis el
Orden y la Familia a que pertenecen, separa-
dos por dos puntos. Se aceptará la cita abrevia-
da del nombre de la Revista (propuesta por
sus editores) o en su defecto el nombre com-
pleto de la misma, cuidando adoptar un crite-
rio uniforme.
CLounsLEY- THOMPSON, J.L., 1979. El hombre
y la biología de zonas áridas. Editorial Blu-
mé, Barcelona.
BrrirroN, E.B., 1979. Coleoptera. In: csIRO
(ed.), The insects of Australia, pp. 495-621.
Melbourne University Press, Carlton.
BurckHaArDrT, D. (en prensa). Jumping plant
lice (Homoptera: Psylloidea) of the tempe-
rate Neotropical region. Part 3: Calophyi-
116 Rev. Chilena Ent. 17, 1989
dae and Triozidae. Zoological Journal of
the Linnean Society.
BLANCHARD, C.E., 1851. Fasmianos. /n: C.
Gay (ed.), Historia Física y Política de Chile.
Zoología, 6: 23-29. Imprenta de Maulde et
Renou, Paris.
Nótese que en el penúltimo caso no se indica
fecha ni volumen de supuesta publicación.
Las citas en el texto se hacen por la mención
del apellido del autor seguido del año de pu-
blicación, separados por una coma. Varios tra-
bajos de un mismo autor publicados en el mis-
mo año, deberán diferenciarse con letras mi-
núsculas (ejemplo: Rojas, 198la, 1981b y
1981c); para citas de trabajos de dos autores se
debe mencionar los apellidos de ambos (ejem-
plo: Rojas 8e Cavada, 1979); trabajos de más
de dos autores deberán ser citados por el ape-
llido del primer autor seguido de el al., varios
trabajos citados dentro de un paréntesis debe-
rán ser separados por punto y coma (ejemplo:
Frías, 1986; Toro £c Rojas, 1968; Grez et al.,
1986 y Rojas £e Cavada, 1979).
La primera vez que se cite en el texto un
nombre científico, deberá llevar el nombre de
su descriptor (ejemplo: Peloridora kushela Chi-
na, 1955) y en lo posible el año de su descrip-
ción. Todas las palabras en latín, incluso abre-
viaturas en latín, deberán ser subrayadas.
Gráficos, diagramas, mapas, dibujos y foto-
grafías llevarán la denominación de Figuras
(abreviado como Fig. en el texto); se usará el
término Tabla para designar cualquier
conjunto de datos presentados en forma com-
pacta.
Se deberá proporcionar en una hoja aparte,
un encabezamiento de página (título acorta-
do) de no más de 80 caracteres, incluyendo
espacios y apellido del autor (ejemplo: Gue-
rrero et al.: Acción parasitaria de himenópte-
ros sobre Plutella xylostella L.).
Los dibujos deben ser hechos con tinta chi-
na negra y papel diamante o en papel blanco
de buena calidad pudiendo usarse además,
materiales autoadhesivos (letra set u otros).
Las fotografías deberán ser en blanco y negro,
papel brillante y con buen contraste e inten-
sidad.
Las figuras llevarán leyenda corta, precisa y
autoexplicativa y serán numeradas correlati-
vamente. En lo posible deberán diseñarse del
tamaño en que se desea sean reproducidas,
teniendo en cuenta las proporciones de la hoja
impresa de la revista.
Si se tuviera que hacer figuras que exceden
el tamaño de la hoja, deberán ser proyectadas
considerando la reducción que sufrirá el origi-
nal. Usar escalas gráficas.
Las leyendas y explicaciones de figuras de-
berán mecanografiarse en hoja aparte.
Cada ilustración deberá llevar además del
número, el nombre del autor, las cuales deben
escribirse con lápiz grafito en su margen o en
el reverso en el caso de fotografías. El autor
puede sugerir el lugar más apropiado para
ubicar las ilustraciones.
El número de cuadros y figuras debe limi-
tarse al mínimo indispensable para compren-
der el texto.
Pruebas de imprenta: el autor recibirá una
prueba que deberá devolver corregida inme-
diatamente.
Apartados: El o los autores recibirán gra-
tuitamente un total de 50 separatas por tra-
bajo. Si desea un número mayor, deben cance-
larlas anticipadamente. La cantidad adicional
debe ser indicada al devolver las pruebas de
imprenta.
CONTENIDO
ARRIAGADA S., G. véase M. ELGUETA D. y G. ARRIAGADA S.
CArrmro bl. Ro véase E. CISTERNAS A. y Ro CARRILLO LL. Loto
Chuarpa T., E. Nidos poligínicos de Vespula germanica (F.) (Hymenoptera: Vespidae)
y eusociabilidad ......... oO Seda Sos aa Ds blas bae.
CisTERNAS A., E. y R. CarriLLO Lt. Ciclo estacional de Schizochelus serratus Phil.
lc precraScaraba cda es oe e
Durer, J.P. El género Tetragoneura Winnertz, 1846 en la Patagonia (Diptera: Myce-
tophilidae). Nueva clave para los machos y descripción de dos nuevas especies
Durer, J.P. Primera Mycetophila patagónica hallada en las Yungas de Bolivia (Dipte-
A od ll to alle o
ELGuUETA D., M. Antecedentes sobre especies de reciente introducción a Chile (Dipte-
ras tratiomyidae, Hymenoptera: Vespidae) eee
ELGUETA D., M. y G. ArRIAGADAS. Estado actual del conocimiento de los coleópteros
de Tilo (ass E
Frrrz, M. y H. Toro. Los tipos de Coelioxys (Hymenoptera: Megachilidae) descritos
por E A a as os
Jackson S., D. Descripción de la larva y pupa de Cycloderus signaticollis F. et G.
(Cada A a oo a
MoRoNI B., J. Aporte al conocimiento de los Haliplidae de Chile. 11. Descripción del
tercer instar larval de Haliplus valdiviensis Moroni, 1980 (Coleoptera: Dytiscoidea)
Toro, H. véase M. Fritz y H. Toro
00.000 0 0101070 0 101040 0 0/0 00
IO O OSO MORO O ONO ORO AO O O ONO OO O OO ONO OSO OOO ORO ONO
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