SUMARIO

CaArrILLO Lt., R., N. MunDaca B. y E. CisTERNAS A. Ametastegia glabrata (Fallen)

especie fitófaga introducida a Chile (Hymenoptera: Tenthredinidae) ........

Martínez, A. y L.E. Peña G. Oogentus castillos sp. nov. (Coleoptera: Scarabaeidae)

ANGULO, A.O. Paraeuxoa Forbes, 1933, versus Caphorma Koehler, 1958 (Lepidopte-

ra: Noctuidae): sinonimia de dos géneros andino-patagónicoS ...............

CALDERÓN, R.; M. GarriDO y C. Pinto. Etapas del crecimiento de Acanthogonatus

rancka Karsch ss 0 Arancas: Nemesis A A

ReEBOLLEDO R., R.; L. ALpa L.; M. Gutiérrez S. y B. GuíÑez S. Antecedentes

biológicos de Notiothauma reedi Mac Lachlan (Mecoptera: Eomeropidae) en el

Monumento Natural Cerro Nielol (Temuco, Chile) ..........ooooccoccco...

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dae: Eumolpnao.. O ES Ne Dt ainia ION

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(Coleoptera: Chrysomelidae: Eumolpinae) sobre Pinus radiata D. Don .......

COMENTARIOS BIBLIOGRÁFICOS" 1.449 IU MODO E O A

NOTICIAS

Contenido

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REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGIA ISSN 0034 - 740X

Publicación oficial de la Sociedad Chilena de Entomología,

Casilla 21132, Santiago (21) - Chile

debe citarse: Rev. Chilena Ent.

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Impreso en los talleres de

EDITORIAL UNIVERSITARIA, S.A.

San Francisco 454 - Santiago

en el mes de diciembre de 1990

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 5-7

AMETASTEGIA GLABRATA (FALLEN) ESPECIE FITÓFAGA INTRODUCIDA

A CHILE (HYMENOPTERA: TENTHREDINIDAE)

1 /

RoserTO CarriLLO Lr.!, NeLY Munpaca B.' y ERNESTO CISTERNAS A.?

RESUMEN

Se señala la presencia en Chile del tentredínido Ametastegía glabrata (Fallen), especie holártica de

hábitos polífagos, que se alimenta de diversas plantas cultivadas y malezas. Este insecto ha sido

encontrado en diversas localidades de la X Región. Se entregan algunos antecedentes de su biología y

de sus plantas hospederas.

ABSTRACT

The presence in Chile of the holoartic sawfly Ametastegía glabrata (Fallen) is reported. Itis a polypha-

gous insect, that feed on different cultivated plants and weeds. The insect has been reported in

different localities of the X'” Region. Aspects of its biology and hosts are reported.

INTRODUCCIÓN

En el otoño de 1987, en la comuna de La

Unión, en el lugar denominado Choroico, se

observó en una plantación de frambuesa de

primer año, cv. Heritage, algunas cañas caídas

sobre el suelo y otras se encontraban dobladas

en forma de V invertida. Examinadas estas

cañas se observó, en su interior o en el lugar en

el cual se había producido el quiebre, una

larva de tendredínido de color verde. Revisio-

nes efectuadas en la misma temporada en

otras plantaciones de frambuesa en Osorno y

Frutillar, permitió detectar su presencia en

dichos lugares.

Las larvas fueron criadas en los laboratorios

de Entomología de la Universidad Austral de

Chile y de la Estación Experimental Remehue

del Instituto de Investigaciones Agropecua-

rias, manteniéndolas en el interior de trozos

de ramillas o bien libres sobre superficies de

papel humedecido y a temperatura de la pieza

Instituto de Producción y Sanidad Vegetal, Facultad

de Ciencias Agrarias, Universidad Austral de Chile, Casi-

lla 567, Valdivia-Chile.

2Instituto de Investigaciones Agropecuarias, Estación

Experimental Remehue, Casilla 1100, Osorno-Chile.

(Recibido: 21 de septiembre de 1988. Aceptado: 15 de

septiembre de 1989.)

de crianza (+ 19%C). En el mes de junio se

obtuvo un adulto en Remehue, y a partir de

fines de octubre, en la Universidad Austral de

Chile. Los adultos fueron enviados al Dr. Da-

vid Smith, del U.S. National Museum, quien

identificó la especie como A. glabrata Fallen.

Clasificación

La especie A. glabrata pertenece a la familia

Tenthredinidae, subfamilia Allantinae y tribu

Empriini. Esta tribu se encuentra ampliamen-

te distribuida en al región holártica, sólo existe

un género fuera de dicha región, con una sola

especie, Antholcus varinervius (Spinola), que vi-

ve en Chile y Argentina. El género Amestastegia

Costa se encuentra presente en las regiones

paleárticas y neárticas, aun cuando una espe-

cie de este género ha sido encontrada en Gua-

temala (Smith, 1979). Esta identificación es

por lo tanto la primera información de la pre-

sencia de este género en Sudamérica.

Distribución

Esta especie se encuentra ampliamente distri-

buida en la región holártica. En la región pa-

leártica se encuentra distribuida desde Siberia

hasta el Mediterráneo. En la región neártica

está presente en Canadá y Estados Unidos de

Norteamérica, alcanzando en este último país

6 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

una distribución hacia el sur hasta el paralelo

38 N, aproximadamente (Smith, 1979).

Hospederos

Este insecto presenta un amplio rango de

plantas hospederas. Sin embargo, pareciera

ser que muchas de las plantas sobre las que ha

sido encontrado corresponden a lugares de

pupación (a los cuales la larva se dirige antes

de pupar). La larva se alimenta preferente-

mente de polygonáceas y chenopodiáceas, en

la primera de estas familias se ha indicado su

presencia en los géneros Fagopyrum spp., Poly-

gonum spp. Rheum spp. y Rumex spp.; en la

segunda de estas familias sobre Chenopodium

spp. Estas plantas deben ser consideradas co-

mo los verdaderos hospederos de la larva.

Adicionalmente se ha determinado su presen-

cia en tallos de Solanum, Lythrvum, Zea; en saxi-

fragáceas Ribes y Philadelphus; en rosáceas Ru-

bus, Prunus y Malus; vitáceas Vitis; salicáceas

Salix y madera elaborada (Blunk, 1953; Che-

vin, 1979; Cymorek, 1963; Smith, 1979; Essig,

1958).

En observaciones realizadas por los auto-

res, se ha determinado su presencia en plantas

de Rumex spp., Rheum rhaponticum, en prima-

vera-verano, en el interior de frutos de Prunus

persicae y en ramillas de Rubus idaeus (frambue-

sa) y Vacconvum corymbosum (arándano).

Características cromáticas

Hembra y macho azul negruzco y negro, con

patas naranjas, base de coxas y tarsos negros

en el tercer par de patas. Labro blanquizco. La

longitud de la hembra varía entre 7,4-7,8 mm

y la del macho entre 6,1-6,4 mm (Smith, 1979)

(Fig. 1). La larva es de color verdoso dorsal-

mente y amarillo claro ventralmente. Cabeza

con dos manchas oscuras, una a cada lado del

vertex. Región dorsal con abundantes plie-

gues.

Biología

Es un insecto polivoltino, en América del Nor-

te. Smith (1979) señala la presencia de tres

generaciones anuales, aun cuando informes

anteriores fijaban este número hasta en cua-

tro (Blunk, 1953). El insecto adulto que emer-

ge en primavera, deposita sus huevos en la

Figura 1: Aspecto general de Ametastegia glabrata (Fallen).

región abaxial de hojas de polygonáceas y che-

nopodiáceas, principalmente de las primeras,

produciendo la larva en la hoja orificios de

pequeño tamaño, circulares u ovalados (Fig.

2). Las larvas una vez que completan su ali-

mentación en su último estadio larval, se mue-

ven a lugares leñosos para formar una cámara

pupal. Es este hábito de la larva el que permite

encontrarla en un amplio número de plantas

hospederas, así como en madera aserrada. El

insecto inverna en el último estadio larval co-

mo prepupa en la región holártica, la situación

es similar en nuestro país. En primavera pupa

y emerge como adulto desde mediados del

mes de octubre. En el mes de noviembre y

diciembre se ha observado la presencia de lar-

vas alimentándose de plantas del género

Rheum rhaponticum (ruibarbo) y Rumex spp. en

las comunas de La Unión y Puerto Octay.

Carrillo et al.: Ametastegia glabrata en Chile 7

Figura 2: Larva de Ametastegia glabrata y aspecto del daño.

Importancia económica

Este insecto no tiene una gran importancia

económica en la región holártica. En América

del Norte, Essig (1958) la señala principal-

mente como una plaga del manzano, debido al

hábito de la larva de perforar frutos especial-

mente en cultivares tardíos. En Europa diver-

sos autores coinciden en señalar a esta especie

como una plaga en manzano (Bonnemaison,

1965; Blunk, 1953; Vappula, 1959), además,

Chevin (1979) la señala como plaga en planta-

ciones nuevas de vides y en la propagación de

este material.

Discusión

La introducción de esta especie al país debió

ocurrir desde el Hemisferio Norte, ya que es el

área de presencia de este insecto y es altamen-

te probable que haya sido introducida en ma-

terial vegetativo desde dicha área. Esta nueva

introducción, la cual se suma a otras reciente-

mente ocurridas al país (Hylastes ater (Paykull),

Nematus desantiss Smith, Rhyacionta buolana

(Den. Schiff.)), demuestra la necesidad de re-

forzar las barreras fitosanitarias a fin de evitar

este rápido aumento en el número de insectos-

plagas del país.

La importancia de este insecto debe ser con-

siderada tanto en su situación de plaga cua-

rentenaria como por su daño directo. Desde el

punto de vista cuarentenario, puede consti-

tuir un problema en las exportaciones al Me-

dio Oriente, Sudeste Asiático, Japón y Ocea-

nía, debido al comportamiento de la larva, de

formar una cámara pupal en madera, lo cual

puede hacer que se presente accidentalmente

en embalajes en los cuales se emplee madera.

En relación al daño directo ocasionado por

esta especie, estimamos que éste puede ser

apreciable atendiendo a la abundante presen-

- cla de polygonáceas en diversos agroecosiste-

mas. En manzanos podría ser importante, de-

bido al hábito de la larva de perforar este fruto

en busca de un lugar de pupación y al hecho

que la larva forme una cámara pupal bajo la

corteza de manzanos. El daño además podría

ser importante en viveros de frutales. En el

caso de la frambuesa, en particular, el daño

puede ser reducido, debido a que el gran nú-

mero de ramillas que la planta produce anual-

mente, permitiría eliminar a través de la poda

el material infestado.

AGRADECIMIENTOS

Los autores desean agradecer al Dr. David S.

Smith del Systematic Entomology Laboratory,

del U.S. National Museum, por la identifica-

ción del insecto. Investigación realizada en el

marco del proyecto FONDECYT 88-0930.

LITERATURA CITADA

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VAPPULA, N.A. 1959. Vresia tal havinaisa hedelmapuiden

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Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 9-11

OOGENIUS CASTILLOI SP. NOV.

(COLEOPTERA: SCARABAEIDAE)

/ - Sp 52

ANTONIO MarTÍNEZ' y Luis E. Peña G.*

RESUMEN

Se describe Oogentus castallor sp. mov. y se discute su relación con las otras especies del género.

ABSTRACT

Oogentus castillo: sp. nov. from Chile, is described and illustrated. Its relationship to other species of the

genus are discused.

DESCRIPCIÓN

Especie que se puede reconocer a primera

vista, entre todos los Oogenius descritos, por

sus élitros de color testáceos, color no encon-

trado en ninguna de las especies conocidas

hasta ahora.

Su largo es menor de 18 mm. Dorsalmente

convexa y moderadamente brillante, ventral-

mente más plana y pilosa; color general ne-

gro-azulado o verdoso, pudiendo tener visos

metalizados azulados o verdosos; élitro testá-

ceo con sutura y borde lateral, por lo menos

este último en la mitad caudal, oscurecidos,

tono que se amplía un tanto sobre el ápice

distal; pilosidad castaño-rojiza, que en la cara

ventral de pro y mesofémures, proepisterna,

proepímero, meso y región lateral de metas-

ternón es larga, fina y tupida, y rala en bordes

laterales del pigídeo, mitad distal de la cara

ventral del matafémur y lateralmente los es-

ternitos, especialmente los 1 y IV, aquél en la

faz ventral y mitad lateral con hilera transver-

sal de sedas fuertes; sobre el borde laterodor-

'Investigador de Carrera Consejo Nacional de Investi-

gaciones Científicas y Técnicas; colaborando con el Minis-

terio de Salud Pública y Acción Social de la Nación, Repú-

blica Argentina.

“Instituto de Estudios y Publicaciones “Juan 1. Moli-

na”, Casilla 2974, Santiago de Chile.

(Recibido: 20 de octubre de 1989. Aceptado: 10 de

noviembre de 1989.)

sal y distal de meso y metatibias con seditas

espinosas cortas y gruesas.

Cabeza: Dorsalmente glabra, excepto unas

pocas sedas en la frente y occipucio por detrás

del ojo; clípeo anteriormente semicircular con

borde ligeramente levantado; separación en-

tre clípeo y frente algo marcada lateralmente,

ésta levemente convexa, excepto sobre el vér-

tice donde es más notable; canto ocular cunel-

forme, corto. Superficie del clípeo microscó-

pica y apretadamente rugoso-punteada sobre

la frente anterior y medialmente, con zona

corta, arqueada, de puntos impresos e irregu-

lares que no alcanza el borde lateral, la región

mesal con micropuntuación que, sobre el bor-

de ocular y posteriormente, es más marcada,

pudiéndolo ser poco más sobre el borde ocu-

lar, pero no alcanzando a las de la impresión

del borde medial anterior; sobre el canto ocu-

lar con pequeña área lisa, o casi lisa; siendo el

resto microscópicamente subrugoso. Región

ventral con mentón cordiforme, poco conve-

xo, longitudinal y medialmente surcado y cu-

bierto con seditas finas; mandíbula redondea-

da lateralmente y con el ápice arqueado, ro-

ma; maxila con galea-lacinia en bloque trape-

ciforme de borde anterior oblicuo y escotado.

teniendo una pequeña y fina apófisis medial,

palpo con el 4? artejo fusiforme y subigual en

largo a los precedentes sumados, cara ventral

del palpífer pilosa; antena de 10 artejos: esca-

po corto y robusto, dorsalmente engrosado en

maza y con seditas que son más abundantes

10 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

mesalmente, 3% poco más largo que el 4”, el

ancho de la maza subigual al largo de los ar-

tejos 1 al 7, 8% con área sensoria ancha (larga)

punteado-pilosa, 10% con micropuntuación

muy dispersa; ojo convexo, reniforme, muy

finamente facetado.

Pronoto: Más corto que dos veces el largo

elitral, poco convexo, con el contorno margi-

nado; ángulo anterior y posterior muy redon-

deados; borde lateral en arco regular abierto;

borde caudal sublobulado preescutelarmente

y allí casi recto y con margen borroso; borde

anterior con membrana corta, pero evidente

en la región mesal. Superficie punteada fina-

mente, sobre los bordes poco más grande y

marcada; en la mitad con surco longitudinal

poco notable, algo más acentuado mesalmen-

te, sobre los bordes, los puntos más impresos

pueden tener alguna seda. Región esternal

con prosternón (incluyendo esternelo); proe-

pisterna y proepímero con pilosidad fina de

largo moderado y tupida. Mesonoto con escu-

dete poco más ancho que largo, ápice redon-

deado y superficie con puntuación irregular,

teniendo los puntos mayores y más impresos

una sedita de largo moderado y decumbente;

hacia la mitad distal los puntos muy ralos,

predominando los finos que pueden desapa-

recer distalmente. Élitro casi dos veces más

largo que el pronoto, sin margen basal, clara-

mente estriado-punteado; estría sutural bien

marcada y apareciendo casi sobre la base visi-

ble del élitro, entre ésta y la 2% con puntos

irregularmente dispuestos, que sobre el ápice

distal, se pueden ordenar en hilera y confor-

mar una estría suplementaria, entre la sutura

y el tubérculo humeral con 5 estríadas claras

(la suplementaria sólo aparente sobre el ápice

distal), por detrás del tubérculo humeral y

lateralmente con dos o tres hileras irregulares

de puntos que se pierden distalmente y no

alcanzan el ápice; interestría 1 con puntos irre-

gulares que pueden ordenarse en hilera, la

superficie aparentemente lisa excepto sobre el

ápice distal, donde hay micropuntuación irre-

gular que puede extenderse lateralmente; vis-

tas las interestrías con gran aumento, puede

notarse sobre ellas una micropuntuación muy

fina y mal definida; tubérculo humeral poco

notable; callo distal obsoleto; epipleura perdi-

da en la mitad distal y allí el borde con puntos

alargados y pilíferos, el borde también con

seditas que se pierden distalmente. Mesoster-

nón sin tubérculo intercoxal saliente; mesepis-

ternón; metepisternón y región lateral de me-

tasternón cubierto con pilosidad sedosa, tupi-

da y de largo moderado; disco del metaster-

nón con línea sulciforme medial longitudinal

algo ampliada distalmente, a los lados con mi-

cropuntuación y seditas que se tornan más

tupidas lateralmente. Patas con los fémures

ventralmente punteado-pilosos.

Tibia anterior con borde distal oblicuo, bor-

de lateral con 3 dientes notables de ápice ro-

mo, siendo los medio y proximal un tanto

acercados, espolón largo, fino, agudo y más

largo que el primer artejo tarsal; tarso en largo

subigual a la tibia, del 1? al 4? decrecientes, 5%

tan largo, más o menos a los 2 precedentes,

arqueado, y el borde ventral, como en todas

las patas, inerme; uña mayor acodada casi en

la base y allí lobulada, ápice distal romo, uña

menor arqueada, fina y aguzada; oniquio de

todas las patas con 2 sedas, pero con muchos

ejemplares, aparentemente con una. Pata me-

dia con las coxas no contiguas, aunque angos-

tamente separadas; tibia con 2 claras quillitas

dorsolaterales y sus aristas, lo mismo que el

borde distal, con seditas espiniformes nota-

bles, espolones levemente arqueados y algo

aplanados y el ápice no muy aguzado, el

mayor subigual a los 2 primeros artejos, el

menor, poco más largo que el 1% artejo tarsal;

tarso con artejos alargados, el 1% poco más

corto que el 29, desde éste al 4? decrecientes, el

5%, el más largo de todos. Uñas finas, arquea-

das y agudas, la mayor, apenas más corta que

el artejo donde está implantada. Tibia poste-

rior más larga que la precedente, pero de for-

mato y ornamentación muy similar; espolones

parecidos a los medios, pero con el menor

subigual a los 2 primeros y el mayor apenas

más corto que los 3 primeros artejos tarsales;

tarso casi igual en largo al precedente y con

artejos y uñas similares.

Abdomen: Corto, esternitos libres, los II a

V imbricados, este último tan largo como los 11

a IV sumados, y prácticamente con la mitad

posterior membranosa; VI poco más corto

que el V y medialmente el borde caudal con

troncatura angosta y microscópicamente fim-

briada; los esternitos II a VI lateralmente con

puntos pilosos que se pierden hacia o antes de

la mitad; las sedas, largas, finas y oblicuamen-

Martínez y Peña: Oogenius castillos n.sp. 11

te dirigidas hacia atrás. Pigidio poco convexo,

más ancho que largo; superficie rasa y ase-

mejándose a las ondas que dejan las olas en la

playa; base no marginada, lateral y caudal-

mente con finísimo reborde y la superficie y

este reborde con pilosidad fina, larga, pero no

tupida. Genital como en las figuras 1 y 2, con

tambor largo: en norma dorsal atenuado ha-

cia el ápice distal en el cuarto posterior depri-

mido longitudinalmente en surco y medial-

mente el ápice triangular y cortamente mem-

branoso; parámeros más cortos que el tambor

soldados en placa de ápice distal, ligeramente

bilobeado y mesalmente deprimida en surco;

en norma lateral tambor y parámetros sinuo-

sos, estos últimos aguzados; Y desconocida.

Largo: 13,8-16,5; ancho pronotal: 7, 8-8,5;

ancho máximo: 9,7-10,3 mm, aproximada-

mente.

Material examinado y procedencia: 8 3d

de Chile, provincia Ovalle, Fray Jorge, 7-I1I-

1987 y 78 machos de igual localidad colecta-

dos entre el 6 y 9 de marzo de 1990 (G. Cast1-

llo. coll.). Holotipo d en la colección del Mu-

seo Nacional de Historia Natural de Santiago

de Chile, junto con 20 paratipos. 67 paratipos

g gd en la colección Luis E. Peña G. de Santiago

de Chile; y 10 paratipos 3 g en la colección

Martínez en Rosario de Lerma, Salta, Argen-

tina.

Discusión: Por su élitro testáceo, esta espe-

cie es inconfundible. Se Podría acercar a O.

kuscheli Gutiérrez, pero ésta es unicolor con

diferente escultura, el 5 artejo ventralmente

con apófisis dentiforme en los tarso medio y

posterior, distinta relación entre tambor y pa-

rámeros. Se distingue de O. virens Solier y de

O. chilensis Ohaus, por la escultura de pronoto

y élitro, estas especies prácticamente carecen

de estrías notables y los élitros no son testáceos

y, además, en O. chilensis la proporción de

tambor y parámeros es diferente. De O. lario-

sae Martínez, se diferencia por el élitro testá-

ceo y muy claramente estriado, además de los

parámeros del genital masculino. Respecto a

O. arrow Gutiérrez 1949, especie descrita de

2 Je

Imm.

Figuras 1-2. Oogenius castillos n. sp., edeago. 1. vista dorsal;

2. vista lateral.

Puente de Inca en Argentina, que conocemos

in natura, nos remitimos a lo mencionado por

el autor. Esta especie no tiene élitro testáceo,

además el formato es diferente tanto de la

tibia media y posterior, teniendo sólo una pe-

queña quilla. siendo el Tipo un macho, Gutié-

rrez, autor de la especie, no dibujó el genital

esclerosado de ese sexo, lo cual nos hubiera

proporcionado más caracteres. Las especies

de Oogenius han sido tratadas también por Gu-

tiérrez (1951).

Biología: Vuela durante el día en forma muy

rápida y siempre a baja altura entre las 10 y 14

horas. Algunos de ellos caían en tierra, segu-

ramente en busca de la hembra, las que no

pudieron ser ubicadas.

Tenemos el placer de dedicar esta especie a su

colector, señor G. Castillo, quien la remitió a

uno de los autores (L.E.P.G.) de Santiago,

Chile.

LITERATURA CITADA

GUTIÉRREZ A., R. 1949. Notas sobre Scarabaeidae neotro-

picales (Coleoptera Lgmellicornia). Anales de la Socie-

dad Científica Argentina, 148: 9-35.

GUTIÉRREZ A., R. 1951. Notas sobre Scarabaeidae neotro-

picales (Coleoptera Lamelicornia). Anales de la Socie-

dad Científica Argentina, 151: 105-125.

las ptas, inerrimt aa inayas sota o:

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Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 13-17

PARAEUXOA FORBES, 1933, VERSUS CAPHORNIA KOEHLER, 1958

(LEPIDOPTERA: NOCTUIDAE): SINONIMIA DE DOS GÉNEROS

ANDINO-PATAGÓNICOS

ANDRÉs O. AnGuLo!

RESUMEN

Se estudian las genitalias masculinas de las especies que componen los géneros Paraeuxoa Forbes, 1933

y Caphorma Koehler, 1958, excepto P. bayner Koehler y P. meditata Koehler (Lepidoptera: Noctuidae)

las evidencias morfológicas muestran que todas las especies pertenecen a un mismo género, el cual

debe ser Paraeuxoa Forbes, por ley de prioridad. Se describe P. janae n.sp. de Chile.

ABSTRACT

Males genitalia of Paraeuxoa Forbes, 1933 and Caphornta Koehler, 1958 species, except P. baynei

Koehler and P. meditata Koehler (Lepidoptera: Noctuidae) are studied, morphological evidences show

that all species belong to genus Paraeuxoa Forbes, by priority. P. janae a new species, from Chile, is

described.

INTRODUCCIÓN

Dentro del trabajo de identificación y revisión

sistemática rutinaria, hemos encontrado una

serie de especies pertenecientes a dos géneros

de distribución andino-patagónica: Paraeuxoa

Forbes y Caphorma Koehler. Ambos géneros

poseen algunos caracteres en la genitalia mas-

culina que los aproximan, de tal manera que

hemos decidido estudiar el complejo de dichas

especies. Cabe hacer notar que el género Cap-

horma Koehler ha sido estudiado reciente-

mente por Jana-Sáenz (1989).

MATERIALES Y MÉTODOS

Para el presente estudio se utilizó parte del

material que fue estudiado por Jana-Sáenz

(1989) y además otro material que está deposi-

tado en el Museo de Zoología de la Universi-

dad de Concepción (MZUC). Para el análisis

'Departamento de Zoología, Facultad de Ciencias Bio-

lógicas y de Recursos Naturales, Universidad de Concep-

ción, Casilla 2407 - Apartado 10, Concepción-Chile.

(Recibido: 21 de marzo de 1990. Aceptado: 31 de julio

de 1990.)

de las genitalias masculinas se utilizaron las

técnicas de uso corriente (Angulo y Welgert,

1977).

RESULTADOS

Paraeuxoa Forbes, 1933

Paraeuxoa Forbes, 1933, pp. 27 y 28.

Especie tipo del género: Noctua lineifera

Blanchard, 1852.

Caphorniaa Koehler, 1958, p. 9 (nueva sino-

nimia).

Especie tipo del género: Agrotis xanthostola

Mabille, 1885.

Diagnosis: Similar a Euxoa Huebner, pero con

los ojos glabros, con ciltas (pestañas) rudimen-

tarias; antenas biserradas y fasciculadas; tibias

anteriores fuertemente espinosas; tarsos me-

dios y posteriores sin espínulas en el dorso (a

diferencia de Euxoa Huebner). Genitalia del

macho no presenta corona en la valva, y la

porción apical (casi el tercio distal de la valva)

está reducida; digitus más o menos desarrolla-

do y dirigido hacia el ápice de la valva; clásper

oblicuo con su base dorsal hinchada y su ápice

agudo, acercándose hacia el dorso de la valva;

uncus plano, peludo; tegumen engrosado y a

veces con peniculi (pequeños lóbulos proyec-

14 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

tados dorsalmente y provistos de pequeñas

cerdas); ampulla ausente; yuxta en forma de

escudo subpentagonal, con una pequeña

proyección central que termina en punta; ve-

sica provista de espinas en número de 3 a 10

(una de ellas de base ancha y bulbosa).

Paraeuxoa janae n. sp.

(Bigs: 24, 5/y1))

Descripción: Frente con un proceso anular

elevado; antenas del macho fasciculadas; pa-

tagias y tégulas con escamas blancas basales,

negras mediales y castaño apicales; alas ante-

riores castaño-claras, el área costal blanquizca,

con las venas que delimitan —anterior y poste-

riormente— la celda discal, llevan escamas

blancas; celda discal oscura; orbicular (subo-

val) y reniforme castaño-claras; el resto de las

venas llevan escamas castaño-oscuras bordea-

das —en ambos lados— con blancas (contras-

tando fuertemente con el fondo); banda sub-

terminal representada por siete grandes áreas

oscuras entre las venas. Alas posteriores casta-

ño-blanquizcas; patas castaño-claras con esca-

mas blanquizcas. Genitalia del macho: valvas

características del género, su tercio apical re-

ducido, ápice algo agudo —en forma abrup-

ta—; digitus de extremo redondeado, casi tan

largo como el clásper; éste está dirigido hacia

el borde dorsal, en donde apenas sobresale;

yuxta subromboidal con el centro escasamen-

te proyectado, a modo de pequeñísimas espi-

nas; uncus escasamente romo; sacculus algo

romo; saccus algo agudo, un tercio del largo

de la valva; vesica desde la base está doblada

en ángulo recto, posee 5 espinas basales (una

de ellas, el doble en tamaño que las otras, tiene

la base ancha y bulbosa).

Tiempo de vuelo: noviembre, enero y fe-

brero.

Expansión alar: 30,0 - 35,0 mm.

Material examinado: 6 machos.

1 macho (holotipo) [gen. prep.] y 2 machos

(paratipos), Tres Puentes, Feb. 1953, Rodrí-

Figuras 1-6. 1. Genitalia masculina de P. linesfera (Blanchard). 2. Genitalia masculina de P. janae n. sp. 3. Aedeagus de P.

lineifera (Blanchard). 4. y 5. Vesica y aedeagus de P. janae n. sp. 6. Genitalia femenina de P. linerfera (Blanchard). La escala

representa 1 mm.

Angulo: Baraeuxoa Forbes versus Caphorma Koehler 15

guez coll. (MZUC); 2 machos (paratipos), Tres

Puentes, Nov. 1952, Rodríguez coll. (MZUC);

1] macho (paratipo) [gen. prep.], Pta. Arenas, 6

Feb., 1960, Cekalovic coll. (MZUC); 1 macho

(paratipo), Pta. Arenas, 5 enero. 1960, Ceka-

lovic coll. (MZUC); 1 macho (paratipo), Pta.

Arenas, 6 Feb. 1960, Cekalovic coll. (MZUC);

l macho (paratipo), Pto. Natales, Feb. 1953,

Alarcón coll. (MZUC).

Esta especie está dedicada a nuestra colega

Prof. Carmen Jana S., fallecida el 1 de agosto

de 1988.

Paraeuxoa linerfera (Blanchard)

(Me SO)

Material examinado: 2 machos y 1 hembra.

1 macho (gen. prep.) y 1 hembra, Termas Río

Blanco, 28-11-62 (MZUC); 1 macho Cordon

Chapelco, 15-1.700 m, Neuquén, Argent., 1/1/

82, Leg. M. y P. Gentili (MZUC).

Paraeuxoa meditata Koehler

(Fig. 9)

Material examinado: 9 machos.

] macho (gen. prep.) y 4 machos, Tres Puen-

tes, Dic. 1952 (Magallanes, Chile), Rodríguez

coll. (MZUC); 1 macho, Tres Puentes, diciem-

bre 1952, (Magallanes, Chile), Rodríguez coll.

(MZUC); 1 macho, Pto. Natales, Feb. 1953

(Magallanes, Chile), Alarcón coll. (MZUC); 1

macho (gen. prep.), Est. Cerro Castillo, 3-XI-

50 (MZUC); 1 macho Fitz-Roy (85), 400 m, S.

Cruz-Argentina, 18-X1-83, Leg. M. y P. Genti-

li (MZUC).

Paraeuxoa sanctisebasttan: Koehler

(Fig. 10)

Material examinado: 1 macho.

1 macho, Chile, Magallanes, Río Grande, 4-

Dic.-1953, N.N. coll. [Paraeuxoa sancti-sebas-

tan: (det. Koehler)] (MZUC).

Figuras 7-10. Aspecto general del adulto. 7. P. janae n.sp. 8. P. linerfera (Blanchard). 9. P. meditata Koehler. 10. P.

'sanctisebastiani Koehler.

16 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

Cuando Koehler describe esta especie, tam-

bién describe dos subespecies: P.s. sanctisebas-

tiani y P.s. bilineata; sin embargo, a nuestro

parecer —habiendo visto material de la colec-

ción Rodríguez (el cual desgraciadamente no

fue registrado, en cuanto a sus datos)—, estas

dos supuestas subespecies son sólo variaciones

normales de la población, ya que aún no existe

una fuerte evidencia que pruebe lo contrario.

Lista de las especies del género

Paraeuxoa Forbes

1. Paraeuxoa baynei Koehler, 1967, p. 238.

2. P. flavicosta (Wallengreen, 1860, p. 169) n.

comb.

. P. gravida (Mabille, 1885, p. 15) n. comb.

. P. janae n.sp.

. P. lineifera (Blanchard, 1852, p. 76).

. P. meditata Koehler, 1967, p. 283.

. P. nigrolineata (Jana-Sáenz, 1989) n comb.

. P. perdita (Staudinger, 1899, p. 55) n. comb.

. P. sanctisebastiani Koehler, 1954, p. 39.

0 0-=IOD) OLA 09

DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES

Koehler, en 1967, dice —refiriéndose a Pa-

raeuxoa Forbes— lo siguiente: “Ofrece algunas

similaridades con Pseudoleucanta Staudinger,

pero como su mismo autor lo separa de Per-

droma Huebner (Hemieuxoa, Mac Donugh) se-

guimos con nuestra interpretación diferen-

cial”. Respecto a este punto, si bien existe se-

mejanza en los géneros antes mencionados,

ella no permite reunirlos a nivel genérico; más

aún, ambos géneros se diferencian claramente

en caracteres tan básicos como la presencia de

un “cuello hadenino” en las valvas de los ma-

chos en Pseudoleucanmía Staudinger, como tam-

bién la presencia de tan sólo el clásper en la

valva. Además hay otros caracteres que sepa-

ran ampliamente a ambos.

Aspectos sinonímicos de otras especies no-

minales incluidas previamente en el género

Caphorma Koehler, se pueden encontrar en el

trabajo de Jana-Sáenz (1989).

En relación a Paraeuxoa Forbes y Caphorn:a

Koehler las semejanzas evidentes que nos

mueven a promover la sinonimia de ambos

géneros, Paraeuxoa y Caphornia, se basa en una

serie de condiciones morfológicas similares;

ellas son:

1. El clásper y digitus (ampulla sensu Koehler)

se ubican en tercio apical de la valva.

2. Las valvas no presentan una corona desa-

rrollada.

3. El ápice de la valva es triangular.

4. La vesica está armada de espinas en núme-

Lo dera dl0

5. Una de las espinas del cornutus es de base

ancha y bulbosa.

6. La yuxta es subpentagonal con procesos

que se proyectan de su porción central.

Por ley de prioridad el nombre genérico

válido, para incluir las especies aquí estudia-

das, debe ser Paraeuxoa Forbes.

CLAVE PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LAS ESPECIES DE PARAEUXOA FORBES

SEGÚN MACULACIÓN ALAR (MODIFICADA DE JANA-SÁENZ, 1989).

1. Alas anteriores pajizas claras a castaño-claras, con

una línea castaño-oscura bajo la celda, cuya exten-

sión va desde la base del ala hasta la porción media

dela celda A OR 4

1 Alas anteriores generalmente ferrugíneo oscuro

como fondo, sin la línea castaño-oscura bajo la cel-

dambandasnotonas A 2

2 (1”). Alas anteriores con la celda castaño-oscura; con

una banda castaño-oscura bajo la base de la celda;

banda posterminal indistinta ...........0.......

o O LC NCIOO NE P. perdita (Staudinger).

24 Alas anteriores con la celda concolora con el fondo

del ala y sin la banda castaño-oscura bajo la base de

la celda; banda posterminal definida ......... S)

3 (2”). Alas anteriores con los dos tercios basales del área

costal pajizo, contrastando bruscamente con el res-

to de color de fondo del ala en algunos ejemplares;

en otros, esta área es casi concolora con el fondo del

Mr AN ERA: P. flaviscosta (Wallengreen).

e Alas anteriores de color uniforme, con la banda

basal y anterior transversa muy notorias, pigmen-

tadas con castaño-oscuro ... P. gravida (Mabille).

4 (1). Manchas alares orbicular y/o reniforme ausentes O

CONSI 5

4”. Manchas alares orbicular y reniforme presentes 8

5 (4). Manchas alares orbicular y reniforme ausentes 6

Mancha alar orbicular ausente y la reniforme es

una pequeña manchita alargada desde la M3 hacia

dentro de la celda; expansión alar 24-27 mm...

IO IO CEI Ss a P. baynei Koehler.

Angulo: Baraeuxoa Forbes SES US Caphorma Koehler 17

6 (5). Ala anterior con el color de fondo crema-claro a

amarillento; salvo la línea castaño-oscura, bajo la

celda no hay otras; expansión alar 40-45 mm...

So P. nagrolineata (Jana-Sáenz).

6". Ala anterior con el color de fondo castaño; celdas

alares con un color castaño-Oscuro ........... '/

7 (6'). Ala anterior con las venas cubiertas de escamas más

claras, que contrastan fuertemente con el color de

fondo; expansión alar 30-35 mM ..............

o as ies P. lineifera (Blanchard).

To Ala anterior con las venas cubiertas de escamas

concoloras con el fondo del ala; expansión alar 30

MM P. sanctisebastiani Koehler.

8 (4”). Alas anteriores con las venas cubiertas con escamas

castaño-oscuras (especialmente las venas cubitales),

bordeadas por escamas más claras, contrastando

fuertemente con el color de fondo. . P. janae s.sp.

Sí Alas anteriores con las venas cubiertas con escamas

claras, que contrastan fuertemente con el fondo

oscuro de las celdas ....... P. meditata Koehler.

CLAVE PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LAS ESPECIES DE PARAEUXOA FORBES,

SEGÚN LA GENITALIA DE LOS MACHOS (NO SE INCLUYE P. BAYNEI

KOEHLER, P. MEDITATA KOEHLER NI P. SANCTISEBASTIANI KOEHLER)

(MODIFICADA DE JANA-SÁENZ, 1989).

ll. Vesica del aedeagus con un cornuti formado por más

de Y AUTE OO SOTO SSA 2

14, Vesica del aedeagus con un cornuti formado por sólo

Sd ESUIMAS o sc d00 3 odo oo deceo ra oo are co abs OOa 4

21) Ape dE a: 3

2 Ápice del saccus truncado P. perdita (Staudinger).

3 (2). Ampulla poco desarrollada, costa valvar lisa .....

as P. flavicosta (Wallengreen).

Si Ampulla desarrollada, costa valvar ondulada .. 5

4 (1). Yuxta subromboidal; ampulla (= digitus) sobrepasa

AGRADECIMIENTOS

Se nos hace un deber dar nuestro agradeci-

miento al apoyo infraestructural del Proyecto

de la Dirección de Investigación de la Univer-

sidad de Concepción N? 20.38.11. También

debo expresar mis agradecimientos al Dr. Ma-

rio Elgueta D., quien por intermedio de sus

valiosas sugerencias al texto, le ha dado una

expresión de claridad más pura.

LITERATURA CITADA

ANGULO, A.O. y G.TH. WEIGERT. 1977. Pseudaletia punctu-

lata (Blanchard) y Pseudaletía impuncta (Gueneé): Nóc-

tuidos Hadeninos similares en Chile (Lepidoptera:

Noctuidae). Agro Sur. (Chile), 5(1): 12-17.

BLANCHARD, E. 1852. Noctuelianos. In Gay, C. Historia

Física y Política de Chile, 7: 71-86.

la costa valvar dorsal; tegumen muy ancho .....

ISA P. mgrolimeata (Jana-Sáenz).

4. Yuxta escotada dorsalmente; ampulla (= dagitus) no

como arriba; tegumen normal ................

a P. lineifera (Blanchard).

5 (3). Clásper (= Harpe) dirigido hacia la costa valvar

dorsal, sobrepasándola; ampulla (= digitus) con ápi-

conedon dead P. janae n.sp.

5. Clásper (= Harpe) delgado y agudo; ampulla (=

digitus) con ápice agudo ... P. gravida (Mabille).

Forbes, W.T.M. 1933. A grouping of the Agrotinae Ge-

nera. Entomol. Amer., 14: 1-39.

Jana-SAEnNZz, C. 1989. Estudio crítico del género austral

Caphornia Koehler, 1958 (Lepidoptera: Noctuidae).

Gayana (Zool.), 53 (3): 77-111.

KorEnLERr, P. 1954. La posición sistemática de algunos

Noctuidae argentinos. Rev. Soc. Entomol. Argentina,

17 (3-4): 33-40.

KornLeEr, P. 1958. Agrotinae argentinos (Lep., Noct.)

género y especies nuevos. Rev. Soc. Entomol. Argenti-

na, 20: 9-15.

KoemLEr, P. 1967. Index de las Noctuidae argentinas

(Agrotinae sensu Hampson, Lep. Het.). Act. Zool. Li-

lloana, 21: 253-342.

MabiLLe, M.P. 1885. Diagnosis des Lepidopteres nou-

veaux. Bull. Soc. Philomatique de Paris, ser. 7, 9: 55-

70.

STAUDINGER, O. 1899. Lepidopteren der Hamburger Ma-

galhaensischen Sammelreise 4: 50-80.

WALLENGREEN, F. 1860. Lepidoptera Wierner Entomolo-

gische. Monographien, 4: 169.

RIDE Alicia

E | E di

15) 7 15 » po e

cs io ..) si a

Rev. Chilena Ent.

"1990, 18: 19-24

ETAPAS DEL CRECIMIENTO DE ACANTHOGONATUS FRANCKII KARSCH, 1880

(ARANEAE: NEMESIIDAE)'

RaúL CALDERÓN?, MARCELO GARRIDO? y CECILIA Pinro?

RESUMEN

Se estudia la especie A. francka sobre la base de ejemplares criados en el laboratorio y colectados en el

terreno.

Del ciclo de vida se caracterizan las siguientes etapas:

Postura: se realiza entre agosto y diciembre de cada año, con un promedio de 57,8 huevos por ooteca.

Prelarva: estado único, intracorional, con un diente de eclosión en cada pedipalpo y la ausencia de

estructuras externas típicas.

Larva: estado único, con algunas estructuras externas, presentan un colmillo del quelícero con dos

puntas, no producen tela y viven dentro de la ooteca.

Preninfa: estado único con caracteres de larva (ano no funcional) y de ninfa (hileras funcionales,

presencia de tricobotrias, etc.). Tienen caracteres propios (garras tarsales pares con una corrida de

dientes cada una).

Ninfa: varían entre 6 y 7. Tienen todas las extructuras morfológicas exteriores, excepto las reproduc-

toras. Se alimentan cazando presas.

Adulto: tienen dimorfismo sexual (los machos tiene sus patas proporcionalmente más largas que las

hembras). La longitud total promedio de las hembras es 25,5 mm y el peso promedio es 1,83 g. Al

comparar individuos del mismo estado obtenidos en el laboratorio y en el terreno, constatamos que

los citados en primer término son más grandes, probablemente por las favorables condiciones de

crianza en el laboratorio.

ABSTRACT

The species A. francku has been studied both in laboratory cultivated specimens and those found in

their natural habitat. The following life cycle stages are characterized:

Egg-laying;: it takes place between August and December every year, with an average of 57.8 eggs per

Cocoon.

Prelarva: a single state, intrachorional, with an egg teeth in each pedipalpus. There are no typical

external characteristics.

Larva: a single state; some external structures are present. Larva possess a “false pincer”. They do not

fabricate any web and live in the cocoon.

Prenymph: a single state possessing both larva and nymph features (larva: no functional anus; nymph:

functional spinnerets, trichobotrias, etc.). They have typical traits such as even tarsal claws, with one

row of teeth each.

Nymph: they fluctuate between 6 and 7 in number, possessing all the external morphological

structures, with the exception of the breeding individuals. They feed on the prey they catch.

Adult: the adults show sexual dimorphism. The legs in males are longer than in females. The average

length of females is 25.5 mm with an average welgth of 1.83 g. A comparison between individuals

cultivated at the laboratory and those found in their natural habitat, in relation to similar stages of

development, makes it apparent that the former are bigger than the latter, a fact that may be due to

the favorable laboratory conditions.

"Trabajo financiado por la Universidad de Montpellier II, Francia, y por la Dirección de Investigación de la Universi-

dad de Playa Ancha.

Facultad de Ciencias Naturales y Exactas, Universidad de Playa Ancha de Ciencias de la Educación, Casilla 34-V,

Valparaíso - Chile.

(Recibido: 25 de marzo de 1990. Aceptado: 15 de mayo de 1990.)

20 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

INTRODUCCIÓN

A. francki ha sido objeto de varios trabajos

científicos, dos de los más importantes son el

de Raven (1985), que aclara su posición taxo-

nómica, y el de Iglesias et al. (1987), que reali-

zan un análisis cuantitativo de los caracteres

externos.

El propósito de esta investigación es carac-

terizar cualitativamente los estados de desa-

rrollo, sobre la base de los datos obtenidos de

arañas cultivadas en el laboratorio y colectadas

en el terreno.

MATERIAL Y MÉTODOS

La información obtenida está basada en:

1) Crianza de individuos en el laboratorio, a

" partir de huevos provenientes de una ooteca

colectada en Granizo (Chile - V Región), en

octubre de 1981. Esta ooteca, que la identifica-

mos con el N? 4, contenía 64 huevos, 58 de los

cuales llegaron a preninfa. El estudio hasta

ninfa 6, se basó en la descripción de las mudas

de los 25 individuos más adelantados en el

crecimiento; el de ninfa 7 se basó en los 10

primeros individuos que alcanzaron este esta-

do y, el de ninfa 8, en los 2 individuos que

alcanzaron ese estado.

No se utilizaron las 154 preninfas prove-

nientes de las ootecas 1, 2 y 3, por el retraso en

su crecimiento y la imposibilidad de contar

con el alimento suficiente.

2) Una muestra de 342 individuos colecta-

dos en Granizo, sin considerar el tamaño o

sexo, entre abril y noviembre de 1983.

El material fue estudiado con dos microsco-

pios estereoscópicos: uno Wild (para los ejem-

plares de laboratorio) y otro Nikon (para los

de terreno).

Estadísticas: Técnicas descriptivas univariadas

y bivariadas.

Programas: Paquete estadístico 1.D.A. (Inte-

ractive Data Analysis). Minitab en el com-

putador IBM 4361-LK 5, de la Universidad

Católica de Valparaíso.

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

El ciclo de vida de A. francka tiene las siguien-

tes etapas: huevo, prelarva, larva, preninfas,

ninfas (6 a 12) y adultos.

1) Postura

De observaciones afectuadas en terreno en los

últimos 20 años, estimamos que la postura se

realiza entre agosto y diciembre de cada año.

En una colecta efectuada entre abril y noviem- |

bre de 1983, encontramos 27 ootecas en los

últimos tres meses del muestreo.

Las ootecas viables (24) tienen un peso pro-

medio de 1,13 g (mín. 0,13 g y máx. 2,43 g) y

una cantidad promedio de huevos de 59,44

(mín. 12 y máx. 141); Calderón et al. (1979)

mencionan un promedio de 57,08 para N

igual a 10 ootecas. Ischnothele siemens: (Dipluri-

dae) tiene posturas que varían entre 80 y 150

huevos por ooteca para un N igual a 15 (Galia-

no, 1972). Cinco especies de Theraphosidae

chilenas ovipositan entre 41 y 588 huevos (N

igual a 19 ootecas; datos del autor no publi-

cados).

Es díficil inferir, luego de una colecta en el

terreno, cuándo una hembra ha llegado al

estado adulto, de ahí que pensamos que es

muy importante resaltar las dimensiones de

las hembras capturadas con ootecas, así como

el estado alcanzado según el N? de tricobotrias

de la tibia IV derecha. En nuestro caso, en 27

hembras estudiadas, encontramos ejemplares

que llegaron a adulto luego de pasar final-

mente por las ninfas: V, un ejemplar; VII, tres

ejemps.; VIII, cinco ejemps.; IX, nueve

ejemps.; X, seis ejemps. y XI, tres ejemps. En

resumen, el 74% de las posturas fueron reali-

zadas por hembras que alcanzaron su madu-

rez luego de terminar sus estados ninfales

VITI, IX y X. En la Tabla 1 se presentan las

estimaciones de algumos parámetros de 24

hembras que tenían sus ootecas en buenas

condiciones de conservación.

2) Prelarva

Estado intracorional caracterizado por la au-

sencia de caracteres etológicos y morfológicos

destacados y por encontrarse cubierto por las

membranas del huevo. Su carácter más nota-

ble es la presencia de un diente de eclosión en

la tibia de cada pedipalpo, que le servirá para

iniciar la ruptura de las membranas al comien-

zo de la eclosión.

Concordamos con Canard (1987), pues al

igual que en la mayoría de las Mygalomorphae

citadas por él, en A. francku hay sólo una pre-

Calderón et al.: Etapas del crecimiento de Acanthogonatus francki 21

TABLA 1

ESTIMACIONES DE ALGUNOS PARÁMETROS

DE LAS HEMBRAS DE A. FRANCKII QUE

PRESENTABAN OOTECAS (N=24) EN BUEN

ESTADO DE CONSERVACIÓN.

LAS DIMENSIONES DE LARGO Y ANCHO

ESTÁN EN MM Y EL PESO EN G

(X = PROMEDIO: s = DESVIACIÓN ESTÁNDAR;

CV = COEFICIENTE DE VARIACIÓN).

Caracteres Xx S CV

Longitud total 25,50 4,29 16,80

Long. cefalotórax 11,13 1,49 13,30

Ancho cefalotórax 8,93 1,24 13,80

Long. abdomen 14,34 3,39 23,60

Ancho abdomen 8,99 1,43 15,90

Long. metatarso 8,79 1,16 13,10

Long. tibia 6,66 0,73 10,90

Peso 1,83 0,67 36,60

larva, caracterizada por la ausencia de las es-

tructuras típicas de las arañas; espículas, trico-

botrias, órgano liriforme, órgano tarsal, ojos,

fúsulas, colmillos, dientes en el surco ungueal,

dientes en las garras, cúspides en el labio, pe-

los claviformes; no se alimentan, viven dentro

del huevo y no se mueven.

Se reconoce la ruptura de las membranas

del huevo como el punto inicial del desarrollo

postembrionario.

3) Larva

Depigmentada, con pocos órganos sensoriales

(sin ojos, tricobotrias, ni órganos tarsales, pe-

los escasos), tegumento liso y con espículas

triangulares, tienen dos garras tarsales sim-

ples para cada pata, sin fúsulas y no producen

tela, ano cerrado, colmillo del quelícero bífido

y el margen del surco ungueal no dentado,

permanece inmóvil dentro de la ooteca.

En el resto de las Mygalomorphae se pre-

sentan características similares a Acanthogona-

tus, excepto por la presencia de órgano tarsal

en A. sternalis (Galiano, 1973a), fúsula en hile-

ras en /. siemens: (Galiano, 1972), ausencia de

garras tarsales en Avwculana avicularia (Galia-

no, 1973b) y cuerpo recto en /. siemens: (Galia-

no, 1972).

Hay especies que presentan sólo un estado

larvario como Acanthogonatus (Calderón,

1983), Ischnothele (Galiano, 1972) y Acanthoscu-

rria (Galiano, 1973a); pero hay otras especies

con dos estados larvarios como en Grammostola

(Galiano, 1969, 1973a) y Avicularia (Galiano,

1973b). En esta segunda larva no hay tricobo-

trias, ojos, ni fúsulas, el cuerpo se presenta

curvado y no se mueve, pero posee órgano

liriforme, órgano tarsal y dientes en el margen

del surco ungueal.

4) Preninfa

Es un estado compuesto, que mantiene de la

larva el ano no funcional y el tegumento sin

pigmento; del estado ninfal siguiente se pre-

sentan hileras funcionales (hay fúsulas) y col-

millo del quelícero simple (normal), margen

del surco ungueal dentado, órgano tarsal,

aparecimiento de las tricobotrias, ojos y cuer-

po recto.

Pero esta preninfa tiene caracteres propios:

tegumento reticulado, garras tarsales pares

con una corrida de dientes cada una, locomo-

ción lenta y tendencia gregaria.

La preninfa correspondería al tercer estado

descrito en Acanthoscurria (Galiano, 1973a) e

Ischnothele (Galiano, 1972); en este último gé-

nero ocurre la salida de los individuos desde la

OOteca.

En Grammostola (Galiano, 1973a) y Avicula-

ria (Galiano, 1973b) la preninfa corresponde-

ría al cuarto estado, estando en posesión de las

características citadas en los párrafos ante-

riores.

Los datos de la Tabla 3 estarían justificando

la denominación de la preninfa como estado

juvenil incompleto por Canard (1987) y Holm

(caso D, 1940), como lo demuestran la ausen-

cia de cúspides en el labio y el escaso número

de tricobotrias en sus patas (1/10 del estado

siguiente). Aunque poseen estructuras para

tomar la presa (dientes y dentículos), el ano

está cerrado.

5) Ninfas (Tablas 2 y 3)

Una vez que las preninfas salen de la ooteca,

permanecen juntas sobre la cubierta de seda,

no ingieren alimento, mudan y originan la

ninfa 1; este último estado elimina por prime-

ra vez desechos por el ano y, luego de algunos

días, se dispersan.

Las ninfas poseen todas las estructuras

morfológicas que carecían los estados anterio-

res y se diferencian de los adultos por: la au-

22 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

TABLA 2

DIMENSIONES (MM) DE A. FRANCKII OBTENIDAS DE EJEMPLARES

CRIADOS EN EL LABORATORIO. SE INDICAN LOS PROMEDIOS

Y LA DESVIACIÓN ESTÁNDAR.

Cefalotórax Basitarso Tibia

Estados Largo Ancho Largo Largo

O Preninfa 251 0,1 2,20 + 0,08 1,50 + 0,06 1,30 + 0,07

l Ninfa 3151006 2,50 + 0,07 2,70'=10/08* 12 200107

2 Ninfa 3,90 + 0,11 3, 20540512 3,40 + 0,12 2,80 + 0,10

3 Ninfa 5,01 + 0,14 4,10 + 0,15 4,30 = 0,14 3,60 + 0,12

4 Ninfa 6,40 + 0,17 5, 1024017 5,50 + 0,17 4,40 = 0,14

5 Ninfa 8,00 + 0,24 6,40 + 0,20 6,80 + 0,18 5,40 + 0,30

6 Ninfa 9,80 + 0,23 7,60 + 0,25 SII ZO ODE O

7 Ninfa (9) 11,46 + 0,38 9,29 + 0,24 NADO SOS E 026

7 Adultos (3) 10,89 + 0,09 9231012912 14:="080118,71010:20

8 Adultos (3) 12,40 + 0,58 10,40 + 0,35 13,20 + 0,41 9,40 + 0,35

Los modelos de predicción de cada variable (Y) en función del estado (X) son los

siguientes:

Y = 1,79 + 1,26X

YA IESO SOX Y 12

Y = 1,12 + 0,89X

En base a estos modelos inferimos los promedios de los estados de las hembras que no

obtuvimos en el laboratorio:

7 Ninfa 10,61

8 Adultos 11,87

9 Adultos 13,13

10 Adultos 14,39

11 Adultos 15,65

12 Adultos 16,91

13 Adultos 18,17

sencia de órgano copulador en los machos y de

postura en las hembras.

La ninfa 1 presenta las siguientes caracte-

rísticas: tienen cúspides en el labio (excepto

Grammostola: Galiano, 1969) asociado, posible-

mente, con el inicio de la alimentación; se ali-

menta cazando presas, hecho que podría ex-

plicar el aumento del número de dentículos;

tiene garras bipectinadas y abundantes trico-

botrias en la tibia, metatarso y tarso relaciona-

do, posiblemente, con el comienzo de la vida

libre; son arañas pigmentadas, con tegumento

plegado sin espículas, abundante pilosidad y

órganos liriformes; corresponde al primer es-

tado completo de Holm (1940) y al primer

estado juvenil completo de Canard (1987).

El número total de estados ninfales varía

según las especies y el sexo, así en A. sternalis

hay entre 14 y 17 en los machos y 19 a 20 en las

hembras (Galiano, 1984) y en A. franckú 6 a 7

8,43 951 130

9,41 10,71 8,24

10,39 1,911 9,13

11037 EIA 10,02

1235 14,31 10,91

15133 MO 11,80

14,31 16,71 12,69

en los machos y 8 a 12 en las hembras (Calde-

rón, 1983).

En esta etapa ninfal se logra el crecimiento

de los individuos, es decir, hay una preponde-

rancia de las modificaciones cuantitativas se-

gún Bounhiol (1980, citado por Canard,

1987); existe una fase simple y una fase de

sexualidad según Juberthie (1955), en la pri-

mera de las cuales hay una fuerte tasa de creci-

miento y tendencia a la isometría y, en la se-

gunda, hay una débil tasa de crecimiento y

establecimiento del dimorfismo sexual.

En A. francka (Tabla 2) el incremento pro-

medio del largo del cefalotórax y el largo del

metatarso es, aproximadamente, de 1,2 mm

por cada ninfa. Es posible que la proyección

del tamaño de los últimos estados de las hem-

bras esté sobredimensionado, porque el creci-

miento, generalmente, se hace más lento a

medida que se acercan a adultas.

Estados

0 Preninfa

l Ninfa

2 Ninfa

3 Ninfa

4 Ninfa

5 Ninfa

6 Ninfa

7 Adultos (d)

Calderón et al.: Etapas del crecimiento de Acanthogonatus franckn

A PARTIR DE CRIANZAS DE LABORATORIO.

TABLA 3

CANTIDAD DE ESTRUCTURAS TEGUMENTARIAS DE LOS DIFERENTES ESTADOS DE A. FRANCKII,

SE INDICAN LOS PROMEDIOS Y LA DESVIACIÓN ESTÁNDAR

Dientes

10,0 = 0,0

IPAOENOZ2

13,8 + 0,2

141 0,4

15,4 + 0,9

16,2 + 0,6

16,6 + 0,8

16,8 = 1,1

185 + 3,5

Dentículos

54 1.0

15,0 += 1,7

193 + 2,4

233 + 2,8

28,4 + 3,1

34,6 + 3,8

40,6 + 4,5

45,0 >= 4,0

54,5 + 4,9

Cúspides

0,0 =0,0

6,4 + 1,3

10,7 + 1,8

IDEIOES

20,8 + 3,7

MUY ss 5

34,4 + 6,1

36,1 + 5,3

39,0 + 2,8

Tricobotrias Tricobotrias Tricobotrias

totales tibia metatarso

Ma 10) ZAIDA 10>=0,0

346,9 >= 7,4 18,2 + 0,5 10,8 + 0,6

4108+ 6,2 21,3 += 0/8 14,0 + 0,9

AGO E 23,8 + 0,6 175 >=0,9

5245 Ñ 7,8 26,0 + 0,5 INDESNCO

585,5 + 9,99 28,0 =0,5 2 sa 1

6426 += 11,3 30,0 += 0,6 26,3 + 1,0

690,3 + 13,4 32,1 =0,3 DES

730,0 += 87,1 34.0 =0,0 29,0 + 1,4

8 Adultos (gd)

Los modelos de predicción de cada variable (Y) en función del estado (X) son los siguientes:

EOI NS OO IO 63, 4070000 Y 129014) 58X 0 10:44 2,3

EII

En base a estos modelos inferimos los promedios de los estados de las hembras que no obtuvimos en el laboratorio.

7 Ninfa 17,81 44,60 40,53

8 Ninfa 18,71 49,70 46,23

9 Adultas 19,61 54,80 DIE9S

10 Adultas 20,51 59,90 57,63

11 Adultas 21,41 65,00 63,33

12 Adultas Z2391 70,10 69,03

13 Adultas 22 75,20 74,74

El crecimiento de A. franckú es más lento en

el terreno que en el laboratorio (Tabla 4), ex-

plicable por las óptimas condiciones de cultivo

en este último lugar.

Los modelos presentados aquí sobre la pre-

dicción de cada variable (Y) en función del

estado (X), fueron obtenidos luego del análisis

de los estados de desarrollo 1 al 6 de A. franckau

por Iglesias et al. (1987). Se omitió el estado

“O” por la existencia de un fenómeno biológi-

co expresado por el “salto” en el número de

estructuras merísticas, especialmente, entre el

paso de preninfa a ninfa l; se omitieron los

estados 7 y 8 porque los machos experimenta-

ron un crecimiento alométrico de sus apéndi-

ces al pasar a adultos.

Con el objeto de realizar una comparación

entre el desarrollo de los ejemplares cultiva-

dos en el laboratorio con los colectados en el

terreno, procedimos a inferir los datos de la-

boratorio que nos faltan usando los modelos

indicados.

El reconocimiento de cada estado ninfal en

702,3 32,50 (32) 297

761,2 34,80 (34) 32,84

820,1 37,10 (36) 35,97

879,0 39,40 (38) 39,10

93159 41,70 (40) 42422

996,0 44,00 (42) 45,36

1055,7 46,30 (44) 48,49

particular es típico de cada especie. Esta parte,

generalmente, no se aborda en las investiga-

ciones y, cuando se ha hecho (dientes de quelí-

ceros, espinas y dientes de las garras), no se ha

expresado estadísticamente, por lo tanto, pen-

samos que nuestro aporte realizado con las

tricobotrias de Acanthogonatus (Calderón,

1983; Iglesias et al. 1987), es uno de los prime-

ros hechos en Mygalomorphae.

6) Adultos

A. francku llega a adulto después de la ninfa 6

en los machos de laboratorio, con una forma

diferente a las hembras, debido al crecimiento

notorio de sus patas. Además de los caracteres

sexuales externos alcanzados por los machos

(bulbos y disimetría de las patas), las hembras

presentan espermatecas bien definidas, pero

estas estructuras aparecen por primera vez en

la ninfa 6, por lo cual el argumento definitivo

para designar la madurez sexual de la hembra

es encontrarla con ooteca. En la Tabla 1 se

94 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

TABLA 4

COMPARACIÓN ENTRE EL TAMAÑO PROMEDIO (EN MM) DE LOS DIFERENTES ESTADOS

DE DESARROLLO DE A. FRANCKII, CRIADOS EN EL LABORATORIO (N=25)

Y COLECTADOS EN EL TERRENO (N=342)

Largo cefalotórax en los diferentes estados

6 7 8 E) 10 11 12

1 2 3 4 5

Laboratorio 3,15 3,90 5,01 6,40 8,00

Terreno 2,37 o 12 3,96 4,55 5,95

950 1O6L, 11,87 7 18,155 14.39 1565 16:91

6,70 AI SI SA

presentan los promedios de las dimensiones

de 24 hembras colectadas en el terreno con

ooteca.

CONCLUSIONES

En A. francku el largo cafalotórax de las hem-

bras adultas tiene un valor promedio de 11,13

mm (mín. 5,75 mm y máx. 13,75 mm).

El promedio de huevos por ooteca es 59,44

(mín. 12 y máx. 144) y las posturas están con-

centradas entre los estados que corresponde-

rían a las ninfas 9, 10 y 11.

Los estados de desarrollo de la especie son:

huevo, prelarva, larva, preninfa, ninfa y adul-

to. La prelarva es intracoronial y posee dientes

de eclosión; la larva es extracoronial, pero vive

dentro de la ooteca, posee garras tarsales sin

dientes, colmillo del quelícero bífido, no pro-

ducen tela ni ingieren alimento; la preninfa

vive dentro de la ooteca y luego la abandona,

no ingiere alimento, tienen tegumento reticu-

lado, garras tarsales con una corrida de dien-

tes, aparecen las tricobotrias, producen seda y

son gregarias; las ninfas viven fuera de la oote-

ca, son de vida solitaria, poseen todas las es-

tructuras sensoriales tegumentarias (aparecen

las cúspides del labio y las tricobotrias se hacen

abundantes). Hay 6 a 7 estados ninfales en los

machos y 5 a 12 en las hembras, diferenciales

uno de otro por su dotación de tricobotrias, los

machos adultos surgen después de la ninfa 6

(laboratorio) y las hembras adultas después de

la ninfa 5 (según colectas realizadas en el te-

rreno).

AGRADECIMIENTOS

Los autores expresan sus agradecimientos a

los profesores Sr. H. Toro y Srta. Luisa Ruz,

por la lectura y sugerencias hechas al manus-

crito.

LITERATURA CITADA

CALDERÓN, R.; G. PIZARRO; C. Rojas; J. SaLinas 8c M.

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CALDERÓN, R. 1983. Revision systématique des Araignées

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développement post-embryonnaire de Tryssothele pisst

Simón, 1889 (Mygalomorphes: Dipluridae), These

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CANARD, A. 1987. Analyse nouvelle de développement

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GALIANO, M.E. 1969. El desarrollo postembrionario larval

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Theraphosidae). Physis, 29(78): 73-90.

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GALIANO, M.E. 1984. Datos adicionales sobre el ciclo vital

de Acanthoscurria sternalis Pocock, 1903 (Araneae, The-

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JUBERTHIE, C. 1955. Sur la croissance post-embryonnaire

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Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 25-28

ANTECEDENTES BIOLÓGICOS DE NOTIOTHAUMA REEDI MACLACHLAN

(MECOPTERA: EOMEROPIDAE) EN EL MONUMENTO NATURAL CERRO NIELOL

(TEMUCO, CHILE)

y 1 y e,

Ramón ReBOLLEDO R.!, LiLrE Arpa L.?, MarrrzaA Gutiérrez S.! BasiLio GuiÑez S.?

RESUMEN

Los estudios sobre la biología de Notr0thauma reed: son en general escasos, debido principalmente a que

hasta ahora ha sido difícil de encontrar en la naturaleza. Sin embargo, es una especie frecuente en el

Monumento Natural Cerro Nielol, lo que ha permitido que este trabajo entregue algunos aspectos de

su ciclo estacional, basándose en ejemplares que se encontraban muertos sobre el camino principal del

cerro.

Los resultados logrados muestran que N. reed: es un insecto abundante en el cerro Nielol, y que se

comporta como una especie monovoltina, presentando su mayor abundancia de adultos en los meses

otoñales.

ABSTRACT

Generally speaking, studies on Notrothauma reedi biology are rather scarce, due to the fact that is has

been difficult to find it in nature up to now. However, itis a frequent species in the Nielol hill, this has

enabled us to present some aspects of its season cycle based on dead samples taken from the main hill

road.

The results achieved in our work show that N. reed: is a copius insect in the Nielol hill environment

whick be haves as a monovoltine species appearing as adults during autumn months in its highest

frequency.

INTRODUCCIÓN

Notiothauma reedi ha sido tradicionalmente

considerado como una especie difícil de en-

contrar en la naturaleza (Porter, 1929; Byers,

1965), tanto es así, que Remington (1968) se-

ñala el número de veces que ha sido encontra-

do y los respectivos lugares de captura, los

cuales son: El Salto (cerca de Valparaíso), Val-

divia y la cordillera de Nahuelbuta. A su vez

Peña (1968) reporta el hallazgo de nueve

ejemplares de N. reedz. que fueron colectados

en Pucatrihue (provincia de Osorno) me-

diante trampas para Orthoptera, que conte-

nían Avena Quaker como atrayente. El mismo

'Universidad de La Frontera, Casilla 54-D, Temuco-

Chile.

“Corporación Nacional Forestal, Bilbao 931, Temuco-

Chile.

(Recibido: 17 de abril de 1990. Aceptado: 25 de mayo

de 1990.)

autor fue comisionado por el Dr. Gaysner pa-

ra viajar nuevamente a Pucatrihue, logrando

recolectar esta vez 11 machos y 5 hembras

vivas.

Las investigaciones sobre N. reed comien-

zan en 1877 en que fue descrita por Robert

Mac Lachlan, quien recibió un ejemplar de

esta especie, la que fuera descubierta por el

naturalista Dr. Edwyn C. Reed (Remington,

1968).

Según Byers (1965) y Richard €e Davies

(1984), N. reedi pertenece al orden Mecoptera,

suborden Protomecoptera y familia Notiot-

haumidae. No obstante, según Willmann

(1989) N. reed: pertenece a la familia Eomero-

pidae.

Actualmente el suborden Protomecoptera

comprende solamente tres especies, las que

son consideradas filogenéticamente muy pri-

mitivas, que involucran a la especie chilena

Notiohauma reedi (con ocelos), Merope tuber (sin

ocelos), que vive en Norteamérica, y Austrome-

26 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

rope poultoni (sin ocelos) de Australia (Reming-

ton, 1968; Richard € Davies, 1984; Nieto y

Mier, 1985).

Según Remington (1968), los Protomecop-

tera revisten particular interés, debido a que

este grupo de insectos relictos están muy rela-

cionados con las órdenes Siphonaptera, Tri-

choptera, Lepidoptera y Diptera, no obstante,

Boudreaux (1979) relacionó a Mecoptera con

las órdenes Diptera y Siphonaptera.

Debido a que N. reedi es una especie fre-

cuente en el Monumento Natural Cerro Nie-

lol, es que en el presente trabajo se entregan

algunos antecedentes sobre la biología de este

insecto, en particular su ciclo estacional.

MATERIAL Y MÉTODOS

Para determinar el ciclo estacional se hicieron

observaciones periódicas (cada 8 días en pro-

medio) en los dos caminos pavimentados prin-

cipales que recorren el Monumento Natural

Cerro Nielol, por los que transitan visitantes

tanto a pie como en vehículos, ya sea de día o

de noche.

Los muestreos se realizaron en la mañana,

recolectando todos los ejemplares muertos

que se encontraban en el camino. Algunos de

ellos se mantenían bien conservados, práctica-

mente sin daño visible, otros aplastados contra

el suelo, probablemente por las ruedas de

vehículos o las pisadas de personas visitantes.

El elevado número de individuos muertos

encontrados se puede deber al choque de los

ejemplares en vuelo en contra de los vehículos

que recorren diariamente el Parque.

Es posible que factores como neblina o llu-

via favorezcan esta mortalidad, ya que el golpe

fuerte, en contra de superficies humedecidas,

facilitaría la adherencia de las alas, aparte de la

deformación corporal producida.

Todo el material colectado se encuentra de-

positado en la Colección de la Facultad de

Ciencias Agropecuarias de la Universidad de

La Frontera de Temuco.

La vegetación que circunda el camino com-

prende principalmente especies de hoja pe-

renne, tales como olivillo (Aextoxicon puncta-

tum) y peumo (Cryptocarya alba) y otras que

forman un rodal, con poca penetración de luz

y mucha hojarasca (litre), de aproximadamen-

te 15 cm de espesor.

PRESENTACIÓN Y DISCUSIÓN

Notiothauma reeda se comporta bajo las condi- |

ciones del cerro Nielol (Temuco) como una '

especie monovoltina (Figs. 1 y 2), encontrán-

dose los primeros ejemplares adultos desde

mediados de enero (Fig. 2) hasta finales de

julio, teniendo su mayor peak en los meses

otoñales e invernales.

Se aprecia también (Fig. 1) una ausencia de

adultos en primavera y verano, lo que indica-

ría que es durante estos meses cuando tendría

lugar el desarrollo de las formas preimagina-

les, la que los autores del presente trabajo

esperan entregar en nuevos aportes, descri-

biendo los huevos que, según Peña (1968), son

puestos en una masa gelatinosa y las larvas

que, según Richard y Davies (1984), deberían

ser del tipo eruciforme, que es la forma de

larva característica al orden Mecoptera.

H 1988 t 1989

ADULTOS

Figura 1: Ciclo estacional de Notiothauma reed: en el cerro

Nielol.

Otro aspecto importante es que el mayor

(Tabla 1) número de ejemplares encontrados

en el cerro Nielol, tanto en el año 1988 como

1989, corresponde en ambos casos al mes de

mayo, época en que la humedad no es una

limitante en la Reserva. Esto demuestra que el

insecto está adaptado a condiciones de alta

humedad y también bajas temperaturas, situa-

ción descrita por Peña (1987).

Cabe hacer mención que fueron captura-

dos dos ejemplares adultos de N. reedi en tram-

pa para Ceroglossus (Coleoptera, Carabidae)

que contenían malta con azúcar como atrayen-

te. Además fueron encontrados cuatro ejem-

plares vivos en vísceras de ave. Este hecho,

Rebolledo et al.: Antecedentes biológicos de Notiothauma reedi

2) 418

¡IA

=85k]

[a]

z= 1

SI 9

= Ma

= Y

o O

co o Do. ooo

Ss 32 opos aaa

o EU o 0 D 2 1 o = s

a O E O AO oO

SS 24 a] - N NN Tm <v— N N

p 1988

27-11-88

1248

o -—

Figura 2; Colecta de adultos de Notiwthauma reedi en el

indicaría que el insecto en su estado adulto

puede utilizar estos productos como recursos

alimenticios, lo que permitiría implementar

nuevas técnicas de captura del insecto, no obs-

tante lo anterior, no ha sido atraído ningún

ejemplar en trampa de luz blanca puesta para

atrapar lepidópteros.

La distribución de N. reed: se hizo en base a

revisión de colecciones y a colectas del autor,

lo que permitió determinar que el insecto está

efectivamente presente en la VIII, IX y X

Regiones (Fig. 3). Sin embargo, Remington

(1968) reportó un ejemplar proveniente de El

Salto, sector que está ubicado cerca de Valpa-

raíso, no existiendo antecedentes de la Región

Metropolitana, VI y VII Regiones, por lo que

la probabilidad de que la especie se encuentre

realmente en la V Región es remota, debido a

que en Chile existen muchos lugares denomi-

nados El Salto, bien puede deberse a un posi-

ble error en la etiquetación del ejemplar cita-

do en cuestión.

1989

Monumento Natural Cerro Nielol.

TABLA 1

FECHAS DE CAPTURA DE

NOTIOTHAUMA REEDI

EN EL CERRO NIELOL

Total

Fecha (N* ejemplares)

1-4 5

12-4 8

24-4 E

4-5

19-5 1988 99

24-5 13

3-6 4

E 0

18-2 7

26-2 ES

1-3 5

18-3 18

26-3 12

4-4 7

12-4 18

eE 12

19-5 1989 18

24-5 23

3-6 112

12-6 13

23-6 14

9-7 7

15-7 2

26-7 0

5-8 0

28 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

CONCLUSIONES

Bajo las condiciones del cerro Nielol, N. reedi

se comporta como una especie monovoltina,

cuya mayor densidad de adultos ocurre en los

meses otoñales e invernales, estando adaptado

a condiciones de alta humedad y bajas tempe-

raturas, siendo N. reed: en la Reserva Natural

una especie abundante.

LITERATURA CITADA

Boudreaux, H.B. 1979. Arthropod Phylogeny with spe-

cial reference to Insects. John Wiley 8 Sons, New

York, 320 pp.

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tem des Mecoptera Insecta: Holometabola). Abhan-

dlunger der Senckenbergischen Naturforschenden

Gesellschaff, 544: 1-153.

Cordillera de Nahuelbuta

Curanilahue. vin Región.

Cerro Nielol

emuco, ix Región

Futa Valdivia.xRegión

Pucatrihue,Osorno x Región

Figura 3: Distribución de Notiothauma reed: en Chile.

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 29-37

A TAXONOMIC REVISION OF THE GENUS JANSONIUS BALY 1878:

TAXONOMIC CONFUSION AND TRIBAL RECLASSIFICATION

(COLEOPTERA: CHRYSOMELIDAE: EUMOLPINAE)

IncoLF S. AskevoLD! $e Laurent LeSaGE?

ABSTRACT

The species Haltica aenea Blanchard, 1851, described from Chile, is found to be a eumolpine; it has

been misidentified by authors variously as a species of Chaetocnema (Alticinae), and as two monobasic

genera of Eumolpinae.

The genera Paraulacia Brethes, 1928 (Eumolpinae), and Halticops Brethes, 1928 (here removed

from synonymy of Chaetocnema Stephens), are here placed as junior objective synoyms of Jansonius

Baly, 1878. Eumolpus valdivianus Philippi and Philippi, 1864, Chaetocnema blanchardi Baly, 1877, and

Jansonius alternatus Baly, 1878, are placed as junior subjective synonyms of Haltica aenea Blanchard,

1851; A. aenea is transferred to Jansontus as the senior and valid name, emended to ]. aeneus. Jansonius is

removed from the Section Myochroites, in Adoxini, and transferred to Metachromites in Nodinini.

RESUMEN

Se concluye que Haltica aenea Blanchard, 1851, especie propia de Chile, es un Eumolpinae, la cual ha

sido erróneamente identificada por distintos autores como perteneciente a Chaetocnema (Alticinae) y a

dos géneros monobásicos de Eumolpinae.

Paraulacia Brethes, 1928 (Eumolpinae) y Halticops Brethes, 1928 (removido aquí de la sinonimia de

Chaetocnema Stephens) se consideran sinónimos de Jansontus Baly, 1877. Eumolpus valdivianus Philippi y

Philippi, 1864, Chaetocnema blanchard: Baly, 1877 y Jansomus alternatus Baly, 1877, son considerados

sinónimos de Haltica aenea Blanchard, 1851; esta última es ubicada en el género Jansontus, debiendo

quedar como /. aeneus. Jansonius es transferido desde Adoxini (Sección Myochromites) a Nodinini

(Sección Metachromites).

INTRODUCTION

The Chrysomelidae of Chile are a largely un-

studied and highly endemic fauna; despite ex-

tensive study of Neotropical chrysomelids by

Jan Bechyné, he hardly treated the Chilean

| fauna at all. Blanchard (1851), Philippi and

'Philippi (1864) and Brethes (1928) described

most of the species of Eumolpinae known

from Chile. As was typical for many decades,

authors did not examine type specimens, and/

"Department of Entomology, University of Manitoba,

' Winnipeg, Manitoba, Canada. R3T 2N2. [New address:

Department of Entomology-Biological Control, Florida A

8 M University, Tallahassee, FL, U.S.A. 32307]

| “Biosystematics Research Centre, K.W. Neatby Build-

Ing, Ottawa, Ont. Canada. K1A 06C.

| (Received: 2 May 1990. Accepted: 17 July 1990).

or described taxa from few specimens, so it

comes as no surprise that considerable confu-

sion exists at all taxonomic levels.

The objectives of the present study are to

detail the taxonomic problems that have

arisen due to misidentification of Haltica aenea

Blanchard, 1851, described in Alticinae, to re-

validate and redescribe Jansonius aeneus (Blan-

chard), and to examine the position of Janso-

nus in Eumolpinae.

MATERIALS AND METHODS

Twenty-seven specimes plus types formed the

basis of this paper, borrowed from collections

cited in acknowledgements (BMNH, MNHN,

CHIL, TMB, CAS, USNM), and from CNC

(Biosystematics Research Centre, Agriculture

Canada, Ottawa, Ont., Canada); the collection

of ISA id identified by the coden ISAC.

30 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

Male genitalia were briefly hydrolyzed in

warm potassium hydroxide, rinsed in water,

and studied in a glycerine medium. Female

genitalia were dissected after the specimen

was relaxed in hot acetic alcohol, dehydrated

in isopropanol, cleared and studied in cedar

oil, and permanently mounted in Canada bal-

sam on a small transparent plate. Drawings

were made with a camera lucida.

TAXONOMIC HISTORY

AND DISCUSSION

Certain Alticinae (e.g. Chaetocnema Stephens),

and many Eumolpinae, possess a curious

structure on the meso- and metatibiae (Figure

2): these tibiae are somewhat toothed sub-

apically on the dorsolateral margin, following

which the tibia is “emarginate”; the edge of

this emargination is “ciliate”, appearing a little

like an antennal cleaner found on the pro-

tibiae in many Carabidae. Brethes referred to

this particular structure in descriptions of

both Paraulacia (in Eumolpinae) and Halticops

(in Alticinae). No other known Chilean eu-

Figure 1. Photograph of Jansonius aeneus.

Figure 2. Mesotibia of Jansonius aeneus, mesal aspect.

Figure 3. Spermatheca of Jansonius aeneus.

molpine has such tibial structure, nor has any

other Chilean alticine except Chaetocnema.

The descriptions presented by Blanchard

(1851), for Hoaltica aenea, and by Philippi and

Philippi (1864) for Eumolpus valdivanus, ne-

glected to mention either tibial structure or

unique arrangement of elytral punctures.

Species of Chaetocnema (subgenus Tlanoma

Motschulsky) possess distinctly punctate-

arrangement is unique in Jansonius in that dis-

cal striae are paired in arrangement, with al-

ternating alutaceous and smooth intervals (Fi-

gure 1). It is easily understood that authors

faced with a punctate-striate flea beetle with

emarginate tibiae would place it in Chaetocne-

ned a small species describes in Haltica, with

punctate-striate elytra, to Chaetocnema also.

This appears to be precisely what led Baly

(1877) to mistake Blanchard's H. aenea for a

Chaetocnema; Blanchard's HA. aenea, thus trans-

ferred to Chaetocnema, became a junior secon-

dary homonym of Dibolia aenea Waterhouse

(then also in Chaetocnema); Baly (1877) there-

fore replaced H. aenea with C. blanchards.

Like Baly, Philippi and Philippi (1864) and

Brethes (1928) must have assumed H. aenea

e AA

C— sl —ñ a

Askevold $ LeSage: Taxonomic revision of Jansonus Baly 31

Blanchard to be an alticine. Thus, Philippi

and Philippi (1864), unable to assign speci-

mens of a small eumolpine to any know spe-

cies or genus, but unsure of its generic assign-

ment, described a “¿Eumolpus valdivianus”.

Subsequently, Brethes (1928) proposed the

name Paraulacia to take up E. valdivianus.

Brethes, evidently unaware of Baly's treat-

ment of Haltica aenea and assignment to Chae-

tocnema, also proposed the name Halticops into

which H. aenea should be placed. Naturally,

Scherer (1962) synonymized Halticops with

Chaetocnema, based on Baly's (1877) incorrect

concept of H. aenea Blanchard. Jansonvus alter-

natus Baly (1878) was unconsidered by Bret-

hes (1928).

On the basis of examination of type speci-

mens, Haltica aenea Blanchard, Eumolpus vald:-

.-vianus Philippi and Philippi and Jansonius al-

ternatus Baly are identical, and the genera ba-

“sed on them are therefore synonyms. On the

basis of simple seniority, Halticops Brethes and

Paraulacia Brethes are junior objective syno-

nynms of Jansontus Baly because they are ba-

“sed on the same species. The most senior, and

“therefore valid, name is Haltica aenea Blan-

.chard [not a junior primary homonym of Alti-

¿ca aenea Olivier (1808:690)]?.

The two specimens (in BMNH) that Baly

had determined as H. aenea (and therefore

renamed as Chaetocnema blanchardi) are truly

¡Chaetocnema. The namebearing type of Baly's

C. blanchard: is not one of these specimens;

rather, it is the type specimen of Blanchard's

'H. aenea (MN HN), as stated below. Therefore,

Baly's specimens apparently represent an un-

described species.

The revised synonymies pertinent to this

genus and its single included member, on the

basis of the above discussion, are detailed be-

low. A description is presented in detail for the

included species, wich applies equally to the

genus.

“Haltica Mliger is not a junior homonym of Altica Fabri-

cius (not Altica Geoffroy). Altica was intentionally emen-

ded as Haltica by early authors; it is therefore an unjusti-

fied emendation [cf. ICZN Art. 33(b) (11i)], and the names

A. aenea Olivier and H. aenea Blanchard are not primary

homonyms, or E. valdivianus would be the valid name to

be used.

Jansonius Baly (1878:264)

Type species: Jansontus alternatus Baly

(1878:264), by monotypy.

Paraulacia Brethes (1928:212). Type species

Eumolpus valdivianus Philippi and Philippi

(1864:388), by monotypy.

NEW SYNONYMY

Halticops Brethes (1928:219. Type species

Haltica aenea Blanchard (1851:557), by mo-

notypy (placed in synonymy of Chaetocnema

by Scherer 1962:538, here removed from

synonymy of Chaetocnema).

NEW SYNONYMY

Jansonius: Lefevre (1885:125); Clavareau

(1914:133, in Myochroini), Bechyné

(1950:290, 1953:263, in Myochroini),

Blackwelder (1946:664), Seeno and Wilcox

(1982:64, in Myochroites).

Paraulacia: Bechyné (1953:263, in Myochroi-

ni), Seeno and Wilcox (1982:64, in Myoc-

hroites).

Jansonius aeneus (Blanchard)

NEW STATUS, NEW COMBINATION

Haltica aenea Blanchard (1851:557)

Eumolpus valdivanus Philippi and Philippi

(1864:388) NEW SYNONYMY

Chaetocnema blanchard: Baly (1877:308)

(replacement name for A. aenea Blan-

chard).

NEW SYNONYMY

Jansonius alternatus Baly (1878:264) NEW

SYNONYMY

Jansontus alternatus: Lefevre (1885:125), Be-

chyné (1953:263).

Paraulacia valdiviana: Brethes (1928:212), Be-

chyné (1953:263).

Halticops aeneus: Brethes (1928:219).

Halticops blanchardi: Heikertinger and Csiki

(1940:249); Blackwelder (1946:700).

Eumolpus valdivianus: Blackwelder (1946:663).

Type specimens: Data of individual labels

borne by type specimens are separated by a

“/”. The differing determination labels ISA

placed on these types reflect changes in un-

derstanding of the taxonomic problem as it

became resolved.

Haltica aenea Blanchard (1851:557): LECTO-

TYPE (sex undetermined), MNHN: “15 43

[whitish disc, green underside] / Muséum Pa-

32 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

ris coll générale [greenish, added by N. Berti] /

TYPE [red, added by N. Berti] / Haltica aenea

[handwritten]”. ISA added the labels

“LECTOTYPE Haltica aenea Blanch. design.

IS Askevold, 1988 [red]” and “Halticops ae-

nea (Blanchard) det. IS Askevold 1988”. The

namebearing type of Chaetocnema blancharda,

proposed by Baly to replace Haltica aenea

Blanchard, is the lectotype of Haltica aenea

Blanchard; the two specimens in BMNH that

Baly examined, and which bear a type label,

are not types, because C. blanchard: is merely a

replacement name [cf. ICZN (1985) Article

72e].

Eumolpus valdivianus Philippi and Philippi

(1864:388): LECTOYPE (sex undetermined),

CHIL: “1085 [handwritten, white] / [blank

white label] / Typus [red] / Eumolp. valdivia-

nus Ph. (pale blue, penciled]/ Eumolpus valdi-

vianus Ph. Typus! [Kuschel label] / CHILE

M.N.H.N. Tipo No. 3091”. ISA added the

labels “LECTOTYPE Eumolpus valdivianus

Phil. and Phil. 1864 design. I.S. Askevold

1989 [red]” and “Paraulacia aenea (Blan-

chard) det. I.S. Askevold 1989”. Also in the

Philippi collection there are a single paratype

(CHIL type 33092), and 3 “Typus” specimens

labelled as variations, CHIL types + 3088,

3089 £ 3090), all labelled with the same refe-

rence number, 1085. These specimens were

described as variations of E. valdivianus, a, B

and y; the paratype and the latter three speci-

mens are designated paralectotypes.

Jansonius alternatus Baly (1878:264): HOLO-

TYPE [sex undetermined], BMNH: “Chili /

Type / Type / Type [red trim disc] / Jansonius

alternatus Baly Chili / Jansonius alternatus

Baly Chili [Baly's handwriting] / Baly Coll.”

ISA added the label “Jansonius aeneus (Blan-

chard) det. I.S. Askevold 1989”. Baly appears

to have described it from a single specimen, so

1t 1s the holotype.

Diagnosis: this unusual species is recognized

at once by the combination of small size, pai-

red strial punctures with alternating intervals

alutaceous, meso- and metatibiae emarginate,

with ciliate margin, proepisternum without

ocular lobes, pygidium without median fu-

rrow, and vertex of head with small, oval

fovea.

Description. (Figs. 1-5). Size: 3.3 mm.

Colour: dorsum blackish with slight bronzish

lustre, antennae brownish with apical 5-6 seg-

ments infuscate, pygidium, tarsi and tibiae

brownish.

Head: uniformly coarsely punctate; clypeus

and frons coarsely alutaceous, vertex less so;

vertex with oval, deep median fovea; labrum

alutaceous, medially partly infuscate in some

specimens, apical margin slightly and broadly

emarginate, at subapical declivity with pair of

medial punctures in most specimens, and with

one puncture at lateral angle; frontoclypeus

broadly emarginate at clypeo-labral suture,

about as deeply as labral apex, the surface

toward clypeolabral suture more finely and

sparsely punctured that toward vertex; apical

palpomeres fusiform, infuscate. Antennae:

antennomere 2 curved, mesal surface flat on

concave, like basal segment; segments 3-5 gra-

dually shortened, relatively slender and with

few setae, 6 slightly enlarged, 7-10 subglobo-

se, slightly longer than wide, and densely pu-

bescent.

Pronotum: coarsely irregularly punctate, sur-

face alutaceous laterally, toward midline more

sparsely punctate and less prominently aluta-

ceous, midline broadly impunctate and shiny,

non-alutaceous; each side of disc with three

small, impunctate areas, two just anterad of

midlength and one behind and between these;

hypomeron alutaceous, impunctate; anterior

pronotal marginal bead prominent and broad

laterally, becoming obsolete medially.

Elytra: alutaceous save intervals 2 and 4, the

meshes more or less isodiametric over entire

surface, coarser and granulate toward apex,

but meshes of sutural interval more or less

elongate and longitudinal, much less distinct

than those of other intervals; striae 1-2, and

3-4 paired, closely placed, striae 5-8 more or

less evenly spaced; intervals 2 and 4 slightly

wider than intervals 1 and 3, but appearing

much wider because the are shiny, without

microsculpture; interval 7 with some coarser

extranumerary punctures, striae 7-8 therefo-

re appearing a little irregular or even confu-

sed in some specimens; stria 9 abbreviated,

with only 5-7 punctures extending behind hu-

merus; strial punctures coarse on disc (coarser

Askevold 8 LeSage: Taxonomic revision of Jansonius Baly 33

than those of pronotum), becoming finer api-

cally (finer than pronotum); all intervals with

sparce, seriate to confused punctulae, but

those of alternating non-alutaceous intervals

minute, punctulae apically with distinct to in-

distinct, but fine and short setae; apex broadly

reddish or yellowish in some specimens.

Legs: femora infuscate, with bronzish lustre,

like dorsum; ubiae and tarsi reddish-yellow;

meso- and metatibiae with apical emargina-

tion on outer margin, the margin there dense-

ly setose; tarsal claws with short, acute basal

tooth; tibiae without apical articulated spur,;

protarsus of male with basal two tarsomeres

somewhat broadened.

Underside: prosternum broad, coarsely and

deeply punctate, inconspicuously alutaceous,

longer than metasternum (measured from

meso- to metacoxa); mesosternum short,

punctate, anteriorly alutaceous and im-

punctate; metasternum medially coarsely and

deeply puntacte, punctures tending to form

transverse rugae, laterally punctures sparse,

and surface alutacous; mesepisternum and

meterpisternum alutaceous, impunctate;

abdomen with basal sternite medially sparsely

punctate and indistinctly alutaceous, punc-

tures forming rugae in some specimens,

remaining sterna more uniformly alutaceous,

medial punctures each with long seta; apical

sternite at extreme apex impunctate medially,

without characters that are sexually di-

morphic.

Male genitalia: median lobe (Figs. 4a-e): apic-

al orifice narrow and transverse, far removed

from apex; extreme apex blunt (dorsal aspect)

and slightly upturned (lateral aspect); basal

spur small, poorly developed; basal hood

broadened and fully sclerotized, not strongly

differentiated from rest of median lobe in de-

gree of sclerotization at point of basal spur,

apodemes distinct; tegmen with ventral two

slerites not fused, forming H-shaped structu-

re. Internal sac: internal sac with three small

sclerites located at extreme base of sac near

basal margin of basal hood, one elongate, slen-

der and median sclerite, and two oblique, rec-

tangular, basolateral ones.

Female genitalia: spermatheca (Figure 3):

217u long (one specimen examined), recepta-

cle ovoid, pump strongly bent toward, and

Figure 4. Male genitalia of Jansontus aeneus; a, median lobe, lateral aspect; b, median lobe, dorsal aspect; c, median lobe,

apical aspect; d, dorsal aspect of internal sac sclerites; e, tegmen. bh = basal hood; tg = tegmen; aa = adeaga apodeme; bs =

basal spur; ao = apical orifice; os = orificial sclerites.

34 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

extending beyond, base, without apical pro-

cess.

Natural history: no collecting data give de-

tailed information about host plants. Data

from the TMB specimens (Nr. P-B 300 and

Nr. P-B, 49), as deatiled by Andrassy et al.

(1967) indicate “netted from trees and

bushes” and “netted on dry meadows”, respec-

tively. A single specimen from Rancagua bore

the data “from grass at night”.

Distribution (Figure 5): /. valdivianus 1s

known from few specimens collected from

Concón, Valparaiso, south to Corral, Valdivia.

Specimens examined: details of locality data

from the 27 specimens examined are as fol-

lows (in parenthesis Chilean regions):

(V Región): Concón, 10.X.1965, Mahunka,

Nr. P-B 49 (TMB 1, ISAC 1); between Concón

and Quintero, 14.X11.1965, Mahunka, Nr. P-

B 300 (TMB 2, ISAC 1); El Convento, IX.66

(SMC 2).

Figure 5. Known distribution of Jansontus aeneus, based on

specimens examined. Each dot represent one collection

record, or group of very close records of collection.

(Metropolitana): Sn. J. Maipo, 17.X.1971

(SMC 5, ISAC 2).

(VI Región): Rancagua, 11.23.87, R.L. Zupar-

ko, “from grass at night” (CAS 1).

(VIII Región): Fdo. El Pentágono,

30.09.1973, leg. G. Moreno (CHIL 1, ISAC 1);

Concepción, no date, E.P. Reed (CAS 1); Fun-

do Pinares, XI-1964, T. Cekalovic (CNC 1).

(IX Región): Angol, 7.X1.1942, M. Cerda G.

(E.P. Reed Col''n) (CAS 1); Villarrica, XII. 53,

H. Loóffler (USNM 1).

(X Región): Corral, no date, Philippi collec-

tion (CHIL 1); Valdivia, no date, Philippi col-

lection (CHIL 1).

Aditional material: two specimens labelled

only “Chile” (ex Bowditch coll., MCZ), and

two with no data (ex Monrós coll., USNM)

were also examined. Blanchard (1851) stated

his specimen was probably collected in the en-

virons of Santiago, but was evidently not sure;

Philippi and Philippi (1864) gave Valdivia as

the locality, while Baly (1878) gave only

“Chili”.

DISCUSSION OF

DIA PATAGONICA BOHEMAN

A species described by Boheman (1858:164),

Dia patagonica (Dia Chevrolat = Colaspidea

Laporte) from “Port Famine”, was placed in

Jansontus by Bechyné (1953:263). Earlier, Be-

chyné (1950-292) stated that Eumolpus val-

divianus (which he placed in Paraulacia) did not

belong in Typophorini, and that Colaspidea

patagonica without doubt belonged in another

genus (not Colaspidea). The original descrip-

tion of D. patagonica given by Boheman clearly

precludes assignment to Colaspidea, but does

not preclude assignment to Jansonius. Bohe-

man's species might be assignable to /. aeneus

but it is not possible to ascertain this with any

certainty because none of the principal distin-

guishing characters are stated in the original

description. The type of Boheman's species

is apparently lost or destroyed, as it was not

found among oher Boheman types, under eit-

her the genus Dia or Colaspidea, where it

should logically be found (Persson, personal

communication 1990, Lindskog, personal

communication 1989). For the present, then,

Boheman's species should be left as incertae

Askevold £ LeSage: Taxonomic revision of Jansonius Baly 35

sedas 1n Eumolpinae, and removed from Janso-

nus.

DISCUSSION OF

TRIBAL ASSIGNMENT

Jansonius has been greatly misplaced tribally.

Most recently, it has been placed in the tribe

Adoxini, section Myochroites (e.g. Seeno and

Wilcox 1982), along with a number of other

misplaced genera (including Paraulacia here

synonymized). This tribe appears based on

little more than possession of some form of

dorsal pubescence. However, as in most

groups, pubescence must be regarded as a

character of extreme variability, and of li-

mited importance in higher classification. It

could be argued that a pronotal structure

(“postocular lobes”) and an elytral locking

mechanism (pygidial furrow with correspond-

ing elytral flange) are two key characters that

classification of Eumolpinae could be based

on. Both are complex characters consisting of

several component characters. On the basis of

these characters, four possible grouping can

be made, of which three occur in Chile.

1. Elytral lock present and postocular lobes

present: Myochrous Erichson, “Dictyners”

Baly (of authors), Glyptoscelis Chevrolat

(poorly developed furrow), and an un-

determined genus.

2. Elytral lock present but postocular lobes

absent: Spintherophyta Dejean and Rhabdote-

rus Lefevre. Authors have used post-ocular

lobes as a means fo distiguishing among

genera of Eumolpinae, but the proepister-

num is only a little explanate in Spintherop-

hyta, and does not form a discontinuity of

the prosternal and proepisternal margins

as it does in members of Groups l and 4.

3. Nelther elytral lock nor postocular lobes

present: Jansonius, Psathyrocerus Blanchard,

Philippimolpus Monrós, Hormus Fairmaire,

Stenomela Erichson, and an undetermined

genus.

4. Elytral lock absent, but postocular lobes

present: no genera of this Group are con-

firmed to occur in Chile; specimens of Co-

laspidea labelled Chile are known (USNM),

but they are not distinguishable from speci-

mens from California and may be mislabe-

lled.

Within Group 3, presence of the “tibial

emargination” is a potentially useful character

for further grouping taxa. Taxa possessing

this character appear to be assigned to the

Nodinini (cf. Seeno and Wilcox 1982:51). If£all

these genera posses the tibial emargination,

then this may constitute a good character on

which to base recognition of the tribe. Other

New World genera of Nodinini possessing the

tibial emargination are Paria, Typophorus, and

Metachroma (5 others described by Bechyné

and Horn are also placed in the tribe, but are

unknown to the authors). The remaining

genera are Afrotropical, Australasian and

Oriental in distribution. Of the three New

World genera assigned to Nodinini, only

Metachroma does not posses postocular lobes,

and is assigned to the section Metachromites

(Seeno and Wilcox 1982).

We tentatively reassing Jansonius to the

Nodinini: Metachromites on the basis of lack

of both postocular lobes and elytral locking

mechanism, but presence of the tibial emargi-

nation.

ACKNOWLEDGEMENTS

The following individuals were of inestimable

help with locating and loaning critical type

and/or other specimens this paper is based on,

an are owed thanks: Dr. Sharon L. Shute, De-

partment of Entomology, British Museum of

Natural History, Cromwell Road, London

SW7 5BD (BMNH); Dr. Nicole Berti, En-

tomologie, Muséum National d'Histoire

Naturelle, 45 Rue de Buffon, 75005 Paris

(MN HN); Dr. Mario Elgueta D., Sección En-

tomología, Museo Nacional de Historia Natu-

ral, Santiago, Chile (CHIL), Dr. Otto Merkil,

Hungarian Natural History Museum, Baross

u. 13, H-1088 Budapest, Hungary (I'MB), Dr.

David H. Kavanaugh, Department of

Entomology, California Academy of Sciences,

Golden Gate Park, San Francisco, CA, U.S.A.

94118 (CAS), Dr. Richard E. White, Depart-

ment of Entomology, U.S. National Museum,

Smithsonian Institution, Washington, DC

20560 (USN M) and Dr. Shawn M. Clark, Pest

Identification Laboratory, West Virginia De-

partment of Agriculture, Charleston, WV,

U.S.A. 25305 (SMC). Drs. Per Inge Persson

and Per Lindskog, Sektionen fór entomologi,

36 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

Naturhistoriska Riksmuseet, S-104 05 Stock-

holm, are owed thanks for searching for the

type of Dia patagonica. Research by ISA was

done with the financial support of NSERC

grant ++ AO428 held by Dr. R.E. Roughley,

University of Manitoba. We also thank Go Sa-

to (CNC) for preparation of some figures.

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221.

ADDENDUM TO JANSONIUS

The catalogue of Neotropical Eumolpinae of

Bechyné (1953) is greatly outdated, and re-

trieval of information from Bechyné's many

publications is difficult. Consequently, seve-

ral additional references to other species des-

cribed in or assigned to Jansonius after 1953

were discovered when the preceding publica-

tion was in press, as follows:

Jansonius boggiana (Jacoby) (sub Para); placed

in Periparia Bechyné by Bechyné

(1951:349) (indicated “comb. nov.”, 1953:

120, also), together with Paria subaenea

Jacoby; P. subaenea placed as ab. of Periparia

boggiana by Bechyné (1953:121); for dis-

tributional data see Bechyné (1953:271-2).

Jansonius pubescens Bechyné (1955:638). Para-

guay, San Bernardino; based on at least 1d

and 12.

Jansontus scolytinus Bechyné and Bechyné

(1961a:17). Brasil, Est. Pará, Utinga; based

on 12.

Jansontus vigiensis Bechyné and Bechyné

(1961b: 17). Brasil, Est. Pará, Vigia; based

on 1d.

Bechyné and Bechyné (1961b:17) listed

Jansonius aeneus (as J. alternatus) with the local-

¡ty data of “Argentina: Neuquén, Boquete, xi.

1955”; Tam not able to determine if this speci-

men(s) were correctly determined.

Bechyné (1955:638) placed Jansonius in

Typophorini near Paria (1.e. Typophorini:

Typophorites of Seeno and Wilcox 1982); this

placement is not in agreement with that de-

cided upon above, based on /. aeneus. It is

Askevold £ LeSage: Taxonomic revision of Jansonus Baly 37

therefore possible that the species other than

J. alternatus assigned to Jansontus by Bechyné

do not belong to this genus, but this is not

possible to ascertain at this time.

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BechynÉ, J. 1951. Liste provisoire des Eumolpides de

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ka: Eumolpidae (Col. Phytophaga). Ent. Arb. Mus.

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BeEcHYNÉ, J. and B. SPRINGLOVÁ DE BECHYNÉ, 196la. No-

tas sobre Chrysomeloidea Neotropicais. Bol. do Mu-

seu Paraense Emilio Goeldi, 33: 1-50.

BEcHYNÉ, J]. and B. SPRINGLOVÁ DE BECHYNÉ, 1961b. No-

tas sobre Chrysomeloidea Neotropicais II. Bol. do Mu-

seu Paraense Emilio Goeldi, 37: 1-93.

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 39-48

A REVIEW OF THE TRIBE MENDIZABALIINI COBOS

WITH THE ADDITION OF NEW TAXA

(COLEOPTERA: BUPRESTIDAE)

CharLes L. BeLLamy! and Tomás MOORE

ABSTRACT

Mendizabaliini is transferred to Buprestinae. Phalandia is transferred to Mendizabaliini. In the present

definition, Mendizabalia includes: M. g. germaima, M. g. cyaneovinidis, ssp. nov. and M. penai, sp. nov.

RESUMEN

La tribu Mendizabaliini es transferida a Buprestinae y el género Philandia a la tribu Mendizabaliini.

Mendizabalia queda integrado por las especies: M. g. germaimi, M. g. cyaneoviridas, ssp. nov. y M. penal, sp.

nov.

INTRODUCTION

The serendipitous collection of two specimens

of Mendizabalia germaini (Kerremans) during a

recent visit to Chile by one os us (CLB, January

1989) has led to a reevaluation of the taxa

considered in this paper.

A paper by Toyama (1987) has reduced the

large buprestid subfamily Chalcophorinae to

a synonym of the nominate Buprestinae wit-

hout further commenting on the placement

and respective level of the former chalcophor-

ine tribes. Simply by virtue of Toyama's pro-

posed synonymy, the six tribes used by Cobos

(1975) (Chalcophorini Kerremans, Chrysoc-

hroini Kerremans, Vadonaxiini Descarpen-

tries, Paraleptodemini Cobos, Psilopterini La-

cordaire and Mendizabaliini Cobos) and one

added later by Levey (1978) (Epistomentini)

are transferred to Buprestinae and we will

consider them to be distinct at the tribal level

from other tribes of Buprestinae.

The more recent work of Holynski (1988)

presumes the need to reduce a number of

'Department of Entomology, National Museum of

Natural History, Smithsonian Institution, Washington,

D.C. 20560, U.S.A.

“Sociedad Chilena de Entomología. Casilla 21132,

Santiago-Chile.

(Received: 16 May 1990. Accepted: 12 June 1990.)

tribal level taxa to subtribal level, but then only

elucidates on those taxa classified under a new

concept of Anthaxiini Laporte 8: Gory. Since

the higher taxa of Buprestidae are most pro-

bably still dynamic, we prefer not propose any

change of status ans will leave the Mendizaba-

liini as a tribe to await a more thorough stud y

of the component taxa of the reconstituted

Buprestinae.

DISCUSSION

The currently listed authorship of several taxa

studied herein is spurious and requires some

explanation. The joint work of Germain and

Kerremans (1906) presented the descriptions

of several new taxa of buprestids from Chile,

which have not been uniformly considered in

later works (e.g. Obenberger 1934, 1935,

1936; Cobos 1957, 1974) in which some of the

taxa are credited to both authors while others

are simply attributed to Kerremans. This pro-

blem apparently began with the fact that Ger-

main sent a collection of Chilean buprestids to

Kerremans which included the taxa recog-

nized by Germain as undescribed and which

he provisionally described and labelled with

proposed names. Kerremans, being a world

authority on Buprestidae, recognized that

some of Germain's names would be

homonyms and thus changed these epithets to

40 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

remove this possibility. However, these names

listed as manuscript names of Germain (e.g. p.

392, Philandia araucana P. Germain mss., nov.

sp.) are not the same as nomina nuda as they

were not published without descriptions. It

occurs to us that if Germain was given credit as

the senior author of the paper and since no

statement within the introduction attributing

all new taxa to Kerremans exists, that Germain

and Kerremans should be the authors for all

taxa described in this paper. This leaves one

especially awkward case with Agrilus germana,

but we believe that Germain should be given

the credit due. The authorship of Philandia

and P. araucana should also be changed.

Specimen measurements are taken as fol-

lows: maximum length, from front of head to

apex of elytra; width, across pronotal base;

pronotal proportion, length along midline vs.

width of widest portion. Label data are

presented verbatim with (h) and (p) used re-

spectively for handwritten and printed nota-

tions. The slash mark (/) is used to separate

data from separate, sequential labels. The

following abbreviations are used to refer to

the collections from which material was bor-

rowed or is deposited: MNHN = Colección

Nacional de Insectos, Museo Nacional de His-

toria Natural, Santiago; LPGC = L.E. Peña G.

collection; CLBC = C.L. Bellamy research col-

lection.

Tribe Mendizabalimi Cobos

Mendizabaliini Cobos, 1968:17; 1975:90; Be-

llamy 1985:413.

Type-genus: Mendizabalia Cobos (from origin-

al designation).

Rediagnosis. Elongate; convex; fron-

tovertex projecting between widely separated,

small eyes; eyes well separated from pronotal

margin; antennal cavities widely separated;

frontoclypeus not constricted between an-

tennae, distal margin broadly concave; an-

teclypeus visible; labrum bilobed; antennae

pectinate-flebellate in males, strongly serrate

in females; 1st antennomere greatly enlarged

and swollen distaly; pronotum with lateral ca-

rinae extending only part way from posterior

margin; elytral lateral margins entire; sternal

cavity “open” (Figs. 8, 9) with process not fit-

ting within a well defined meso-, metasternal

cavity; wing venation (Figs. 10, 11) with radial

cell (R) open at base; radial sector vein short;

radiomedial crossvein connecting between ba-

se of R and median vein (M); 1stA either free

or fused at base to 2dA ¡; 2dA, and 2dA> fused

at basal 1/3 of 2dA); 2dA> contiguous with M;

wedge cell present, closed; 4thA present,

elongate.

Remarks. This tribe, as defined by Cobos

(1968) solely for M. germaimi, requires the

addition of Philandia, a relationship over-

looked by Cobos (1974). A superficial com-

parison of Mendizabalia and Philandia might

convince many coleopterists that these two are

not closely related, but a more detailed ex-

amination of the overall ventral morphology

(Figs. 3, 4), antennae (Figs. 5-7), sternal cavity

formation (Figs. 8, 9) and wing venation (Figs.

10, 11) convinces us of a much closer relations-

hip. Philandia is briefly discussed below.

It really is not too surprising that in such an

area of high endemicity that two obviously

relictual taxa are more closely related to each

other than to more distantly distributed taxa.

The natural affinities and proper placement

of Mendizabaliini await demonstration in rela-

tion to the other tribes and subtribes of the

currently dynamic Buprestinae.

KEY TO THE GENERA

OF MENDIZABALIINI,

SENSU NOVO

1. Body somewhat convex in lateral view (Fig. 3); anten-

nal ramae very slender (Figs. 5, 6); pronotum with

same color as head and elytral base, flattened and

entire (Fig. 1); elytra longitudinally costate, surface

striatopunclaie Mendizabalia Cobos

— Body nearly straight in lateral view (Fig. 4); antennal

ramae very swollen (Fig. 7); head and pronotum diffe-

rently colored than elytra; pronotum gibbous with

large lateral excavations (Fig. 2); elytra without costae,

surtace¡stronglyshagrecned

DASS Philandia Germain €: Kerremans

Genus Mendizabalia Cobos

Mendizabalia Cobos, 1957:233; 1968:17; Be-

llamy 1985:413.

Type-species: Agrilus germaini Germain ké

Kerremans (by original designation)

Redescription. Small, length less than 12

mm, elongate, ovoid, convex in lateral view;

dorsal surface glabrous, ventral surface and

Bellamy £ Moore: Review of the tribe Mendizabaliini 41

Figuras. 1, 3, 5, 8, 10, Mendizabalia germami. Fig. 6, M. penal. Figs. 2, 4, 7,9, 11, Philandia valdivianus. Figs. 1, 2, dorsal

habitus: Figs. 3, 4, lateral aspect; Figs. 5-7, antenae, dorsal aspect; Figs. 8, 9, sternal cavity, ventral aspect; Figs. 10, 11, wing

venation, ventral aspect (scale lines = 1 mm).

42 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

legs sparesely covered with fine, semi-erect

setae.

Head with depression on frontovertex;

eyes small, widely separated, inner margins

slightly converging dorsally; frontoclypeus

depressed medially between and ventral to an-

tennal cavities; distal margin of frontoclypeus

broadly, shallowly arcuate; anteclypeus par-

tially visible; labrum feebly bilobed distally;

maxillary palpi with third palpomere longer

than second, rounded distally; mentum rec-

tangular; submentum trapezoidal; antennae,

of males flabellate from antennomere 4, of

females serrate; sensory pores and sensilla

broadly distributed over entire surface of

flabellate/serrate antennomeres.

Pronotum trapezoidal, slightly wider than

long, widest at base; anterior margin arcuate;

posterior margin biarcuate; lateral margins

more or less straight, narrowing gradually

from rounded, subacute posterolateral angles

to anterior margin, carinate from basal angle

to past middle; disc flattened, with narrow,

longitudinal, medial, depressed line which

terminates at deep premarginal fovea.

Scutellum small, subcordiform.

Elytra narrower than pronotum at base;

humeri moderately elevated, oblique, lateral

margins more or less straight along basal 1/2,

widening and broadly arcuate on apical 1/2,

widest at about apical 1/3; narrowing to sub-

truncate apices; epipleuron extends from base

to apicolateral angle; disc costate.

Thoracic sternites: prosternum with an-

terior margin concave; disc slightly de-

pressed medially; process slightly convex in

lateral view, depressed medially, rounded api-

cally; sternal cavity essentially open, being a

depression on the disc of mesosternum; mete-

pimeron mostly visible beyond epipleuron,

only just slightly hidden posterolaterally by

basolateral abdominal projection; metacoxal

plate moderately dilated.

Abdomen with sternites 1 and 2 slightly

longer together than 3, 4 and 5; suture be-

tween 1 and 2 indicated along entire width;

sutures between all sternites nearly straight;

margin of sternite 5 narrowing laterally to

rounded apex; pygidium not visible dorsally

beyond elytral apex.

Wing (Fig. 10): with radial cell narrow,

elongate, slightly open basally; radiomedial

crossvein connects from near basal angle to

near apex of shortened medial vein; anal veins

all present; IstA vein not connected at base;

wedge cell closed, elongate; 4thA vein elon-

gate.

Legs: femora elongate, subfusiform, tibiae

longer than femora, narrow, with two short

apical spines; tarsi with first tarsomere lateral-

ly compressed, length subequal to 2, 3 and 4

taken together; first four tarsomeres with ven-

tral pulvilli; tarsomere 5 strongly appendicu-

late.

Remarks. The species of Mendizabalia are

very distinctive buprestids and are easily sepa-

rable from all other taxa of both the chilean

fauna and the genera of the more broadly

reconstituted Buprestinae. It is a taxon which

should offer much evidence for those study-

ing the phylogeny of the family in looking for

evolutionary trends, direction and character

state transformation. The following species

and subspecies descriptions are shortened for

brevity and do not reflect generic character

states. The species and subspecies of Mendiza-

balia may be separated as in the following

short key.

KEY TO THE SPECIES

AND SUBSPECIES

OF MENDIZABALIA

COBOS

1. Pronotum densely punctate (Fig. 18); head more ellip-

tical in frontal view (Fig. 12); elytral apices with costae

as in Fig. 20; male genitalia with single apicolateral

sensor seta (Pigi) A E M. penax, n.sp.

— Pronotum sparsely, shallowly punctate (Fig. 15); head

more round in frontal view (Figs. 13, 14); elytral apices

with costae as in Fig. 17; male genitalia with three

apicolaterallsetaci(Pigs 22123) TAI A e 2

2. Dorsal integument bicolorous: head, pronotoum and

basal 1/3 of elytra iridescent blue, apical 2/3 of elytra

¡Midescentaed ua A de AAA SAS

A a M.g. germami (Germain € Kerremans)

— Dorsal integument unicolorous, iridescent bluish

greentto grecnisitblL

1. Mendizabala germaini germaimi

(Germain €: Kerremans)

(Eres SO SOS lo 22)

Agrilus germaimi Germain € Kerremans,

1906:393; Germain €: Kerremans 1907:27;

Obenberger 1936:1184; Olave 1940:124;

Blackwelder 1944:326.

Bellamy 8: Moore: Review of the tribe Mendizabaliini 43

2 si

o *

o o 00 !

RON 15) do o0o03%

IN e ROTO !

% o 5

%o0 D ts os 00% 4

e vw.” E (0) EAN

o a Di0O ¿ol

22 23

Figuras. 12, 18 - 21, Mendizabalia pena:. Figs. 13, 15 - 17, 22, M. germaini. Figs. 14, 23, M. germaini cyaneovindis. Figs.

12-14, head, frontal aspect; Figs. 15, 18, pronotum, dorsal aspect; Figs. 16, 19, pronotum, lateral aspect; Figs. 17, 20,

left elytron apex, dorsal aspect; Figs. 21-23, male genitalia, dorsal aspect (scale lines = 1 mm).

44 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

Agrilus bicolor Germain (in (att) 1m: Germain ée

Kerremans 1906:393; Germain 8 Kerre-

mans 1907:27; Germain 1911:73;

Obenberger 1936:1184; Olave 1940:124;

Blackwelder 1944:326.

Mendizabalia germaimi, Cobos, 1957:235;

1968:17.

Redescription. Male. Size: 9.1 X 2.5 mm;

elongate, ovoid, convex in lateral view, head,

pronotum and small area around humeri dark

iridescent blue; antennae mat black; disc of

pronotum with some greenish blue reflection;

area around humeral blue spots bluish green,

a narrow golden sutural band extends to be-

fore basal 1/3 then diverges towards lateral

margins; entire surface of apical 2/3 beyond

golden band a deep iridescent red with golden

punctures in striae; underside more or less

uniformly violet with bluish reflections lateral-

ly and along abdominal sutures; head and

pronotum moderately shallowly punctate;

elytra with punctate striae between longitu-

dinal costae; dorsal surface glabrous, ventral

surface and legs sparsely covered with fine,

semi-erect setae.

Head (Fig. 13): nearly round in frontal

view; with depression on frontovertex; eyes

small, widely separated, inner margins slightly

converging dorsally; frontoclypeus depressed

between antennal cavities medially, this de-

pression with more coarse punctures and

moderately dense pile of semi-erect setae; a

transverse depression extends across disc of

frontoclypeus dorsal to broadly, shallowly

arcuate distal margin; antennae (fig. 5) with

antennomere 1 swollen, subgeniculate; 2

small, globose; 3 smaller than 2, wider than

long, 4 - 11 flabellate.

Pronotum (Figs. 15, 16): 1.23 X wide as

long, widest at base; anterior margin arcuate;

posterior margin biarcuate; lateral margins

more or less straight, narrowing gradually

from rounded, subacute posterolateral angles

to anterior margin, carinate from basal angle

to about middle, disc flattened, with narrow,

longitudinal, medial, depressed line which

terminates at deep premarginal fovea;

scutellum small, subcordiform, golden.

Elytra narrower than pronotum at base;

humeri moderately elevated, oblique; lateral

margins more or less straight along basal 1/2,

widening and broadly arcuate on apical 1/2,

widest at about apical 1/3; narrowing to sub-

truncate apices; epipleuron extends from base

to apicolateral angle; disc costate with con-

figuration of costae at apex as in Fig. 17.

Underside: prosternum with anterior mar-

gin concave; disc slightly depressed medially;

process slightly convex in lateral view, de-

pressed medially, rounded apically; abdomin-

al sternites 1 and 2 slightly longer together

than 3, 4 and 5; suture between 1 and 2 in-

dicated along entire width; sutures between all

sternites nearly straight; margin of sternite 5

narrowing laterally to rounded apex; pygi-

dium not visible dorsally beyond elytral apex.

Legs: femora elongate, subfusiform, tibiae

longer than femora, narrow, with two short

apical spines; tarsi with first tarsomere lateral-

ly compressed, lenght subequal to 2, 3 and 4

taken together; first four tarsomeres with ven-

tral pulvilli; tarsomere 5 strongly appendicu-

late, claws with tips widely separated.

Genitalia: as in Fig. 22.

Redescribed from one of two males (CLBC)

collected as recorded below.

Female. Differs from the male essentially

only in the shape and configuration of the

antennomeres which are serrate.

Variation. Males (n = 3),8.6-9.1 xXx 2.4-2.5

mm; females (n = 3), 8.7 - 9.6 X 2.4 - 2.8 mm.

Material examined. Holotype, female

(MN HN): Pemehue, Ene-1896 (p); 1 male

(MN HN + 2124): no locality data, but with an

orange *Holotipo” (p) label and a label in

Kerremans hand “germaini kerremans Type”

(h); 1 female (LPGC): Valdivia, XI1.1962, G.

Monsalve (h); 1 female (LPGC): Valdivia,

6.XI1.76, leg: Krahmer (h); 2 males (CLBC):

CHILE, Valdivia Prov, 3 km W Las Lajas, W.

La Unión 650 m, 10/11.1.1989, CL Bellamy

(p)/beating Nothofagus sp (p).

Remarks. Cobos (1957) described Mendiza-

bala based on a single female specimen of M.

g. germaimi and illustrated the ovipositor. Ac-

cording to the description of Germain $ Ke-

rremans (1906), the specimen they described

as Agrilus germaii was also female and yet the

specimen clearly labelled as the holotype from

MNHN, along the typical label of Kerremans,

is a male. The specimen from Pemehue is a

female and we believe this is more probably

the holotype, with the labels perhaps having

been switched between these two specimens.

Bellamy £€e Moore: Review of the tribe Mendizabaliini 45

However, we will not change the labels back,

simply add a label to the female indicating that

this is the specimen which we believe is the

holotype.

This taxon may be separated from M. penaa,

sp. nov., as indicated in the preceeding key

and differs in the shape of the head; the con-

—figurations of the antennomeres; the shape,

lateral carinae and punctation of the pro-

notum; the configuration of the apical elytral

costae and, most noticeably, by the beautiful

dorsal coloration. It can be separated from the

new subspecies, M. g. gyaneoviridis, as dis-

cussed following the diagnostic description

below.

2. Mendizabalia germaimi cyaneoviridas

ssp. nov.

(Figs. 14, 23)

This subspecies differs from the nominate

form as follows: Diagnosis. Holotype, male.

Size: 7.7 X .3 mm; entire dorsal surface irides-

cent bluish green; discal portion of elytral base

to along suture before basal 1/3 a more intense

green; head and pronotum moderately shal-

lowly punctate; elytra with punctate striae be-

tween longitudinal costae; dorsal surface

glabrous, ventral surface and legs sparsely co-

vered with fine, semi-erect setae; pronotum

1.29 x wide as long; scutellum dark green.

Genitalia: as in Fig. 23, mounted on a card

beneath the specimen.

Female. Differs mainly by having an-

tennomeres 4 - 11 serrate with these an-

tennomeres wider than long.

Variation. Male paratype, 8.2 X 2.4 mm;

female paratype, 7.7 X 2.2 mm.

Material examined. Holotype, male

(MNHN ex LPGC): Las Trances, Nuble,

11.83, leg. J. Escobar; 2 paratypes: 1 male

(CLBC), 1 female (LPGC): same data as

holotype, except 1-11.1989 and no collector

name.

Remarks. This subspecies is named for the

different dorsal coloration and may be sepa-

rated from the nominate subspecies most

obviously by the more or less unicolorous dor-

sal surface as well as slight differences in dor-

sal punctation and vestiture. In addition,

cyaneoviridis can be distinguished by dif-

ferences in the antennae with the flabellate

antennomeres of the males more slender and

the serrate antennomeres of the female wider

and the lateral portions narrowed and pro-

longed. This might well be a transitional state

between the more normal serrate condition of

the female of g. germami and the male state.

The genitalia of these two subspecies are es-

sentially identical, as would be expected with

the discussed differences having probably di-

verged with their current geographic separa-

tion (Fig. 24).

3. Mendizabalra penar, Sp. nov.

(Figs. 6, 12, 18 - 21)

Description. Holotype, male. Size: 9.2 X 2.6

mm; elongate, ovoid, convex in lateral view;

head and pronotum mat black, pronotum

with brunneous cast especially on posterior

1/2 and along posterior margin; antennae

brunneus; elytra with basal 1/3 and crests of

longitudinal costae deep subnitid blue, then

intercostal surface of apical 2/3 beyond nar-

row golden-green band a dark roseocupreous

with golden punctures in striae; underside

black brunneus cast or bluish or violet reflec-

tions laterally and along abdominal sutures;

head, pronotum and thoracic sternites

rugose; elytra with punctate striae between

longitudinal costae; dorsal surface glabrous,

ventral surface and legs sparsely covered with

fine, semi-erect setae.

Head (Fig. 12): elyptical in frontal view;

with depression on frontovertex; eyes small,

widely separated, inner margins slightly con-

verging dorsally; frontoclypeus depressed

between antenal cavities medially; a transver-

se depression extends across disc of frontocly-

peus dorsal to broadly, shallowly arcuate distal

margin; antennae (Fig. 6) with antennomere 1

swollen, subgeniculate; 2 small, globose; 3

smaller than 2, wider than long, 4 - 11 flabe-

llate.

Pronotum (Figs. 18, 19): 1.34 X wide as

long, widest at base; anterior margin arcuate;

posterior margin biarcuate; lateral margins

more or less straight, narrowing gradually

from rounded, subacute posterolateral angles

to anterior margin, carinate from basal angle

to beyond midpoint; disc flattened, with nar-

row, longitudinal, medial, depressed line

which terminates at deep premarginal fovea;

46 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

scutellum small, subcordiform, black with

brunneus cast.

Elytra narrower than pronotum at base;

humeri moderately elevated, oblique; lateral

margins more or less straight along basal 1/2,

widening and broadly arcuate on apical 1/2,

Erro

Terrilorjo

chileno

. Antartico Sy

Figura. 24; Distribution of Mendizabalia spp. O M. ger-

mami german (Germain £ Kerremans); Á M. germaimi

cyaneovtridas, ssp. nov. and and U M. penaz, sp. nov.

widest at about apical 1/3; narrowing to sub-

truncate apices; epipleuron extends from ba-

se to apicolateral angle; disc costate with confi-

guration of costae at apex as in Fig. 20.

Underside: prosternum with anterior mar-

gin concave; disc slightly depressed medially;

process slightly convex in lateral view, de-

pressed medially, rounded apically; abdomin-

al sternites 1 and 2 slightly longer together

than 3, and 5; suture between 1 and 2 in-

dicated along entire width; sutures between all

sternites nearly straight; margin of sternite 5

narrowing laterally to rounded apex; pygl-

dium not visible dorsally beyond elytral apex.

Legs: femora elongate, subfusiform, tibiae

longer than femora, narrow, with two short

apical spines; tarsi with first tarsomere latera-

lly compressed, leght subequal to 2, 3 and 4

taken together; first four tarsomeres with ven-

tral pulvilli; tarsomere 5 strongly appendicu-

late, claws with tips widely separated.

Genitalia: as in Fig. 21, mounted on a point

beneath the specimen.

Material examined. Holotype, male

(MN HN ex LPGC): El Coigual, Cord. Curicó,

21, 23 Enero-1964, Coll: L.E. Peña (p).

Remarks. This new species is named for

Luis E. Peña to recognize his contributions to

the study of chilean Buprestidae and to thank

him for bringing the authors together for the

first time.

This unique specimen was the one studied

by Cobos (1968) and thought by him to repre-

sent the male of M. germain:. It differs in the

aspects of coloration; the shape of the head,

punctation, especially of the pronotum; the

narrower elytral costae and the configuration

of the costae at the apices. It also comes from

the most northerly locality yet know for Men-

dizabalia. The figure of the male genitalia (Fig.

21) is a copy of that given by Cobos (1968).

Genus Philandia Germain € Kerremans

Philandia Germain 8 Kerremans, 1906:391;

Germain € Kerremans 1907:23; Germain

1911:73; Obenberger 1935:787; Blackwel-

der 1944:322; Cobos 1974:106; Bellamy

1985:419; Moore 1985:116.

Type-species: Philandia araucana Germain

€ Kerremans (by monotypy).

Remarks. Cobos (1974) studied the female

Bellamy £ Moore: Review of the tribe Mendizabaliini 47

holotype of P. araucana and discussed in detail

the morphology in relationship to the Au-

stralian genus Nascio Laporte $ Gory con-

-Cluded that the proper placement for Philan-

dia was within the Buprestini until such time as

the male genitalia and/or larvae could be stu-

died. In a recent revision of Nasciordes Kerre-

mans, Williams (1987) did not discuss any

relationship with Philandia. We have not been

able to study any larval material and the male

genitalia as illustrated by Moore (1985) shows

a similar structure in the basal apodemes and

degree of fusion of the parameres. However,

while the presence of sensory setae on the

parameres was not clearly illustrated by

- Moore; the setae are indeed present and in a

reducted number similar to Mendizabalia.

These genitalic sensory setae are a character

state used by Cobos (e.g. 1980) to separate the

putative primitive/derived factions of the en-

tire family with the presence of these setae

placing Philandia on the more derived side.

The two species of Philandia were di-

agnosed, redescribed and separated in a key

by Moore (1985) and the reader is referred to

that work for additional comments on these

taxa. For comparative purposes, P. valdiviana

(Phil. 8c Phil.) is illustrated in Figs. 2, 4, 7, 9 €c

The very different gross appearance of the

two species of Philandia in comparison to the

species of Mendizabalia is apparently due to the

Batesian mimetic convergent complex of di-

verse beetle taxa modelled on a lampyrid of

the genus Pyractonema McDermott, as men-

tioned by Moore (1985).

Two males of P. valdivianus were collected

along with the lampyrid model and mimics

belonging to the families Alleculidae, Ceram-

bycidae, Elateridae and Oedemeridae at:

Chile, Malleco Prov, Parc Nacional Nahuelbu-

ta 1100 m, 5-8.1.89, CLBellamy (p)beating

foliage Nothofagus antarctica (p).

ACKNOWLEDGMENTS

We would like to thank the following in-

dividuals for their assistance and other

favours extended: Lynn S. Kimsey, Univ. of

California, Davis, for inviting one of us (CLB)

to join the trip which allowed the authors to

meet; Luis E. Peña for his guidance and good

company during that trip, for the loan of the

specimens in his collection and for his di-

ligence and superb collecting skill over many

years which have produced so many interest-

ing beetles, including some of those described

herein; Brian Levey, for sharing his un-

published opinions, and confirming ours ab-

out the relationships of these interesting an-

imals; to Mario Elgueta and one anonymous

referee for their constructive comments on an

earlier draft of the manuscript and to Analia

A. Lanteri, Museo de La Plata, for her sugges-

tions and linguistic assistance during the com-

pletion of the final draft.

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CHECKLIST OF CHILEAN BRUCHIDAE WITH NEW SYNONYMIES

AND NEW COMBINATIONS (COLEOPTERA)

JoHn M. KiNGSOLVER'

ABSTRACT

A checklist of the chilean Bruchidae is given. New combinations and new synonymies are included.

Amblycerus caryoboriformis (Pic) and Stator tigrensis (Pic) are cited for the first time in Chile.

RESUMEN

Se entrega una lista de las especies de Bruchidae presentes en Chile. Se incluyen nuevas combinaciones

y nuevas sinonimias. Amblycerus caryoboriformas (Pic) y Stator tigrensis (Pic) son citados por primera vez

para Chile.

In recent years, an increase in exports of agri-

cultural products from Chile into the United

States has prompted an increased awareness

of insects, among them Bruchidae, being car-

ried along with the products. Regretably, keys

to genera and species of Bruchidae are lacking

for this distinctive fauna. Asa first step toward

a long-delayed faunal treatment of the family

for Chile, this list updates current scientific

names for each of the described species found

in that country. Il am fortunate to have ex-

amined all but two of the typespecimens.

Several species originally described in

Bruchus, and later included in Aconthoscelides

Blackwelder's (1946) Neotropical checklist are

here assigned to Lithraeus. Because these spec-

les lack metatibial carinae and bear a single

subapical femoral denticle (or no denticle),

they more properly fit the description of

Lithraeus than that of Acanthoscelides. Each

species name so transferred is labeled “New

Combination”. New Synonyms are similarly

indicated.

A modern comprehensive treatment of the

taxonomy of the Chilean Bruchidae is needed.

Porter (1933) published a brief species list,

"Systematic Entomology Laboratory, PSI, Agricultu-

ral Research Service, U.S. Department of Agriculture,

Beltsville, Maryland 20705, U.S.A.

(Received: 31 May 1990. Accepted: 23 June 1990.)

and Olalquiaga (1949) presented a short pap-

er on Chilean species intercepted in the U.S.

and deposited in the National Museum at

Washington, DC. Several species have been

treated in papers by Bottimer (1968), Decelle

(1966), Kingsolver (1967, 1968a and b, 1973,

1975, 1982, 1983), Kingsolver and Borowiec

(1988), Teran and Kingsolver (1977), and by

Teran and L'Argentier (1979), but species re-

corded from the area are buried in catalogues

(Pic, 1913; Blackwelder, 1946).

Spermophagus sophorae Fahraeus (1839) was

described from “Chili” was included in pre-

vious species catalogs as part of the Chilean

fauna; however, it has not been recovered in

the New World since its description. Kingsol-

ver and Borowiec (1988), after a study of type-

specimens, concluded that, since $. sophorae 1S

known only from Africa and Asia, that “Chili”

most likely refers to the former Chinese pro-

vince of Chili visited by Fahraeus in 1831, and

that $. sophorae should be stricken from the

New World species lists.

This is the first paper to bring together a

checklist of the currently known fauna.

Data in this list are arranged in the follow-

ing order: specific name, author, date and

page, original genus, and notes. Complete

literature citations can be found in at the end

of the paper.

50 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

Family BRUCHIDAE

Subfamily AMBLYCERINAE

Amblycerus Thunberg, 1815

caryoboriformis Pic, 1910:110 (Spermophagus).

New record for Chile

thomas: Brethes, 1925:203 (Spermophagus).

NEW SYNONYMY

Zabrotes Horn, 1885

subfasciatus Boheman, 1833:111 (Sper-

mophagus).

musculus Boheman, 1833:112 (Sper-

mophagus)

semifasciatus Boheman, 1839:137 (Sper-

mophagus)

pectoralis Sharp, 1885:492 (Spermophagus)

semicinctus Horn, 1894:411 (Spermophagus)

dorsopictus Lepesme, 1941:201 (Sper-

mophagus)

Subfamily BRUCHINAE

Acanthoscelides Schilsky, 1905

argillaceus Sharp, 1885:452 (Bruchus)

armitager Pic, 1931:35 (Bruchus)

obreptus Bridwell, 1942:256

obtectus Say, 1831:1 (Bruchus)

irresectus Fahraeus, 1839:18 (Bruchus)

tetricus Gyllenhal, 1839:22 (Bruchus)

pallidipes Fahraeus, 1839:91 (Bruchus)

subellipticus Wollaston, 1854:15 (Bruchus)

acanthocnemus Jekel, 1855:15 (Bruchus)

breweri Crotch, 1867:389 (Bruchus)

varicornis Motschulsky, 1874:239 (Bruchus),

not Brulle, 1832

Bruchus Linnaeus, 1767

pisorum Linnaeus, 1758:356 (Dermestes)

obscurus Philippi and Philippi, 1864:360

(Bruchus), not Fahraeus, 1839.

philippi Pic, 1912:92, as a replacement

name for obscurus Philippi and Philippi, not

Fahraeus, 1839. NEW SYNONYMY

Callosobruchus Pic 1902

maculatus Fabricius, 1775:65 (Bruchus). This

species is provisionally included because 1 was

unable to find specimens that indicated that

the species is established in Chile.

Lithraeus Bridwell, 1952

egenus Philippi and Philippi, 1864:358 (Bru- |'

chus). NEW COMBINATION

atomartus Boheman, 1858:11 (Bruchus), not

Linnaeus, 1761

pauperculus Philippi and Philippi, 1864:358

(Bruchus), not LeConte, 1857

chilensis Schilsky, 1905:20 (Bruchus), as a

new name for atomarius Boheman, 1858,

not Linnaeus, 1761. NEW SYNONYMY

chilensis Pic, 1912:92 (Bruchus) as a new na-

me for pauperculus Philippi and Philippi,

1864 not LeConte, 1857. NEW SYNONY-

MY, previously synoym of bimutatus

bimutatus Pic, 1913:110 (Bruchus) as a new

name for chilensis Pic, 1912, not Schilsky,

1905. NEW SYNONYMY.

elegans Blanchard, 1851:294 (Bruchus)

ruficolis Motschulsky, 1874:222 (Bruchus).

NEW SYNONYMY

cingulatus Motschulsky, 1874:229 (Bruchus).

NEW SYNONYMY

obscurior Pic, 1902a:51 (Bruchus)

electus Bridwell, 1952:125 (Lithraeus)

ferrugineipennis Blanchard, 1851:294 (Bru-

chus). NEW COMBINATION

leguminartus Gyllenhal, 1833:69 (Bruchus).

NEW COMBINATION

ingae Fahraeus, 1839:27 (Bruchus). NEW

SYNONYMY

melanocephalus Fahraeus, 1839:87 (Bru-

chus). NEW SYNONYMY

conspurcatus Blanchard, 1851:291 (Bru-

chus). NEW SYNONYMY

subroseus Motschulsky, 1874:227 (Bruchus).

NEW SYNONYMY

mutatus Pic, 1912:92 (Bruchus). NEW COMBTI-

NATION

rufulus Philippi and Philippi, 1864:360

(Bruchus), not Fahraeus, 1839

bisignatipennis Pic, 1938a:23 (Bruchus).

NEW SYNONYMY

poverus Blanchard, 1851:292 (Bruchus). NEW

COMBINATION

praecanus Motschulsky, 1874:220 (Bruchus).

NEW COMBINATION

pyrrhomelas Philippi and Philippi, 1864:359

(Bruchus). NEW COMBINATION

bicolor Philippi and Philippi, 1864:359 (Bru-

chus). NEW SYNONYMY

Kingsolver: Checklist of Chilean Bruchidae 51

scutellaris Philippi and Philippi, 1864:358

(Bruchus). NEW COMBINATION

Megacerus Fahraeus, 1839

eulophus Erichson, 1847:124 (Bruchus)

laticornis Blanchard, 1851:288 (Bruchus),

not Blanchard, 1844.

leucogaster Blanchard, 1851:293 (Bruchus)

Penthobruchus Kingsolver, 1973

germaimi Pic, 1894:65 (Pachimerus (sic))

Pseudopachymerina Zacher, 1952

spinipes Erichson, 1834:252 (Bruchus)

jaspideus Erichson, 1847:125 (Bruchus),

aculeatus Motschulsky, 1874:236 (Bruchus).

NEW SYNONYMY

lallemanti Marseul, 1875:39 (Bruchus

(Pachymerus))

Rhipibruchus Bridwell, 1932

picturatus Fahraeus, 1839:2 (Bruchus)

leiboldi Philippi, 1859:669 (Megalorhipis)

Scutobruchus Kingsolver, 1968

ceratioborus Philippi, 1859:670 (Bruchus)

cassivorus Motschulsky, 1874:207 (Kytor-

hinus)

vagenotatus Pic, 1938a:19 (Bruchus)

gastos Kingsolver, 1968a:285

Stator Bridwell, 1946

testudinarius Erichson, 1847:124 (Bruchus).

New record for Chile

tigrensis Pic, 1938b:20 (Bruchus). New record

for Chile.

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anuales.

from south of Santiago to the VII Region.

INTRODUCCIÓN

Las “chinches de encaje” o tíngidos (Hemipte-

ra, Heteroptera, Tingidae), están representa-

dos en Chile por cinco especies (Drake, 1939;

Drake and Ruhoff, 1965):

— Coleopterodes liliputiana (Signoret, 1863)

— Stenocader tingidordes (Spinola, 1852)

= Cantacader germaim: (Signoret, 1863)

- —Teleonema carmelana (Berg, 1892)

= Cantacader chilensis (Reed, 1900)

-—Teleonema elata (Drake, 1935)

— Corythaica caestri (Reed, 1900)

Su importancia y biología son desconocidas

en el país y no están representadas en grandes

números en las colecciones nacionales. Las

ninfas y adultos se alimentan de los jugos ve-

getales y en algunos países pueden alcanzar

altas densidades, constituyéndose en plagas

de importancia. Estas erupciones en la pobla-

ción no se producen con las especies nativas.

¡Estación Experimental La Platina (INIA), Casilla

439-3, Santiago-Chile.

(Recibido: 9 de junio de 1990. Aceptado: 22 de julio de

1990).

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 53-55

PRESENCIA EN CHILE DE CORYTHUCHA CILIATA (SAY)

(HEMIPTERA: HETEROPTERA: TINGIDAE)

Ernesto Prapo C.!

RESUMEN

Se informa de la presencia en Chile de la “chinche del falso plátano”, Corythucha ciliata (Say), con una

breve descripción del insecto. Se colectaron desde una localidad situada al sur de la ciudad de Santiago

hasta la VII Región. Se estableció mediante muestreos semanales un ciclo con tres generaciones

ABSTRACT

The presence of the “sycamore lacebug”, Corythucha ciliata (Say), and a brief description of the insect is

reported for Chile. Weekly leaf samples indicated three generetions per year in the study area, that is

Sin embargo, desde comienzos de 1985 se han

sucedido colectas y detecciones de grandes

números de una especie de tíngido hasta ese

momento no conocida en el país. Este insecto,

identificado como Corythucha ciliata (Say), pro-

voca graves daños en el árbol ornamental lla-

mado “plátano oriental” (Platanus spp.), su

hospedero primario, si bien secundariamente

puede ser colectado en otras especies arbóreas

como el fresno (Fraxinus sp.) (Drake and

Ruhoff, 1965). Su nombre común correspon-

de a “chinche del falso plátano” (“sycamore

lacebug”).

Los primeros ejemplares colectados, cono-

cidos por el autor, provienen de Calera de

Tango en la Región Metropolitana, con fecha

enero de 1985. Posteriormente han sido de-

tectados en envases de fruta de exportación,

adonde llegaron como insectos acompañan-

tes, lo que refleja su capacidad de dispersión

pasiva. En la actualidad esta especie se distri-

buye desde el sur de la Región Metropolitana

(Buin) hasta la VII Región.

C. ciliata es originaria de los Estados Unidos

de Norteamérica y se introdujo accidental y

recientemente a Europa (Gil y Mansilla, 1981)

en donde constituye una severa amenaza a los

plátanos orientales, por los daños directos y

54 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

por ser vector de los hongos Gnomoma platan:

(Kleb.) y Ceratocystis fimbriata (Ell. y Halst.).

MATERIALES Y MÉTODOS

Los ejemplares utilizados para la descripción

provienen de la localidad de Buin, y se han

dibujado en cámara lúcida acoplada a un este-

reoscopio. Las observaciones sobre su ciclo

biológico provienen de muestras de la misma

localidad, tomadas a partir de comienzos de

septiembre de 1989, cuando aún los ejempla-

res adultos se encontraban invernando bajo la

corteza del árbol. Posteriormente se colectó 10

hojas semanalmente, contando el número de

huevos, ninfas (sin diferenciar los diferentes

instars) y adultos.

RESULTADOS

DESCRIPCIÓN

Huevos (Figura 1*). Poseen la forma de un

pequeño barril, de color negro, con la abertu-

ra u opérculo hacia arriba. Son puestos en el

envés de la hoja a los lados de la nervadura,

fuertemente fijados y cubiertos de material

adhesivo que los protege. Están ocultos por la

pubescencia de la hoja.

Ninfas (Figura 1b). Recién emergidas son de

color blanco transparente y se ubican sobre las

nervaduras, donde comienzan a alimentarse.

Con las mudas adquieren un color negro, con

ornamentaciones de espinas, y finalmente se

desarrollan las yemas alares. Pasa a través de

cinco estadios larvales.

ww T

Figura 1 a. Postura de huevos de C. ciliata. b. Ninfa de C.

cihata.

Adultos (Figura 2). Como única especie del

género Corythucha en Chile, se distingue bien

por la cabeza sin espinas visibles, vesícula pro-

notal o mitra cubriendo totalmente la cabeza,

antena pubescente, expansiones laterales del

pronoto (paranota) ancho y armado con espi-

nas en los márgenes. Color general del cuerpo

visto dorsalmente es blanco, transparente, con

zonas oscurecidas en las elevaciones de los éli-

tros, ventralmente es de color negro. Largo

total: 3,75 - 4 mm.

BIOLOGÍA

Ciclo (Figura 3). Inverna como adulto bajo la

corteza del árbol, en numerosas y densas agre-

gaciones. Su número decae a medida que

transcurre la estación invernal. A fines de sep-

tiembre, y coincidiendo con la brotación del

plátano, los adultos abandonan su refugio y se

instalan en el envés de la hoja. Pronto se visua-

lizan los primeros huevos. Su incubación es

bastante larga y la emergencia de ninfas se

produce aproximadamente cuatro semanas

Figura 2: Adulto de C. cilrata.

Prado: Presencia en Chile de Corythucha ciliata 55

ES] ADULTOS El ninras U Huevos

z ZA

eee: on S

ATT IALALIR DIO

SEPTIEMBRE (OCTUBRE NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO FEBRERO

AAN

MARZO ABRIL MAYO JUNIO JULIO AGOSTO

Figura 3: Ciclo biológico de C. caliata en la zona central de Chile. Flecha indica migración de adultos al tronco para invernar.

después, a comienzos de noviembre. Los pri-

meros instars presentan en un comienzo una

distribución agregada para luego distribuirse

más homogéneamente. Sobre la hoja se obser-

van manchas negras brillosas que correspon-

den a los excrementos de los insectos. Los

adultos permanecen durante largo tiempo en

la hoja, con un período de oviposición muy

largo, lo que se traduce en un traslapo de

generaciones. El segundo período de postura,

correspondiente a la segunda generación, co-

mienza aproximadamente a mediados de di-

ciembre. Un tercer momento de alta oviposi-

ción se presenta a fines de febrero y es el

comienzo de la tercera y última generación.

Los imagos bajan a invernar a la corteza du-

rante marzo, momento en el cual las hojas ya

se encuentran severamente dañadas.

AGRADECIMIENTOS

El autor agradece al Licenciado en Biología

Sr. Fernando Rodríguez y al Sr. Jorge Berríos

por las figuras que acompañan este texto.

Igualmente la valiosa colaboración del Sr. Ro-

berto Trincado en el análisis de los datos de

campo.

LITERATURA CITADA

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Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 57-59

PARÁSITOS Y DEPREDADORES DE LARVAS DE CERAMBYCIDAE

Y BUPRESTIDAE (COLEOPTERA) DE CHILE

Juan ENRIQUE BARRIGA al

RESUMEN

Se citan por primera vez para Chile taquínidos parásitos de cerambicidos, entregándose un listado de

insectos parásitos (Diptera, Hymenoptera), y depredadores de larvas (Coleoptera: Cleridae, Diptera:

Asilidae) de Cerambycidae y Buprestidae. Se entrega además algunos antecedentes biológicos de

Pristaulacus sp. (Hymenoptera: Aulacidae), y Callotroxiss edwards: Aldrich (Diptera: Tachnidae).

ABSTRACT

Tachinid flies parasitizing Cerambycidae are for the first time reported in Chile. A list of parasits

(Diptera, Hymenoptera) as well as larval predators (Coleoptera: Cleridae, Diptera: Asilidae) of both

Cerambycidae and Buprestidae is also mentioned. Biological data of Pristaulacus sp. (Hymenoptera:

Aulacidae), and Callotroxis edwards: Aldrich (Diptera: Tachinidae) is provided.

INTRODUCCIÓN

El propósito de esta nota es dar a conocer

parásitos tanto dípteros como himenópteros

obtenidos en crianzas de Cerambycidae y Bu-

prestidae, y además depredadores de larvas,

como son Cleridae (Coleoptera), y Asilidae

(Diptera).

Se cita por primera vez para Chile a espe-

cies de Tachinidae (Diptera) como parásitos

de Cerambycidae y Buprestidae (véase Gui-

maráes, 1975).

En primer lugar, se presentan las especies

de Cerambycidae criadas en laboratorio y a

continuación aquéllas de Buprestidae. Para

cada una de ellas se entregan las identificacio-

nes de las especies parásitas y/o depredadoras

obtenidas de dichas crianzas, incluyendo loca-

lidad y fecha de emergencia de estos últimos.

CERAMBYCIDAE

Prioninae

Maicroplophorus pena Galileo.

— Dexiinae sp. (género y especie aparente-

¡Sociedad Chilena de Entomología, Casilla 21132,

Santiago-Chile.

(Recibido: 7 de julio de 1990. Aceptado: 13 de sep-

tiembre de 1990).

mente no descritos) (Diptera: Tachinidae),

Lonquimay, prov. Malleco, X-88.

—Obelophorus landbeck: (Philippi) (Diptera:

Asilidae), Lonquimay, prov. Malleco, X-89.

Lepturinae

Callisphyriss molorchowdes Guérin.

— Proglochin maculipennas Philippi (Hymenop-

tera: Pteromalidae), El Volcán, prov. Cor-

dillera, X/XI-87 y X/XI-89.

Callisphyris vespa Fairmaire et Germain.

—pupario de Tachinidae sp. (Diptera), La

Dehesa, prov. Santiago, X-89.

— pupario de Tachinidae sp. (Diptera) hiper-

parasitados por microhimenópteros, La

Dehesa, prov. Santiago, X-89.

Hephaestion larios: (Bosq).

—Callotroxis edwards: Aldrich 1938 (Diptera:

Tachinidae), El Manzano, X/XI-89; San Jo-

sé de Maipo, X/XI-89; Río Colorado, X/XI-

89; San Gabriel, X/XI-89; El Volcán, X1-89;

prov. Cordillera.

— Natalis laplacii Laporte (Coleoptera: Cleri-

dae), El Manzano, prov. Cordillera, 1989.

—Labena sp. (sp. 1) (Hymenoptera: Ichneu-

monidae), El Manzano, prov. Cordillera,

X-89.

— Pristaulacus sp. (sp. 1) (Hymenoptera: Aula-

58 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

cidae), El Manzano, X/X1-89; San José de

Maipo, X/XI-89; Río Colorado, X/XI-89;

San Gabriel X/XI-89; prov. Cordillera.

Platynocera andina Cerda.

— Hymenoptera sp. (larva), La Dormida,

prov. Chacabuco, IX-89.

Cerambycinae

Grammicosum maculicorne Germain.

— Dexiinae sp. (género y especie aparente-

mente no descritas) (Diptera: Tachinidae),

Naltagua, prov. Talagante, IX-88.

Ancylodonta tristis Blanchard.

— Tachininae sp. (Diptera: Tachinidae), Lo

Vásquez, prov. Valparaíso, X-89.

Holopterus annulicornas Philippi.

— Gauldianus porteri Lanfranco (Hymenopte-

ra: Ichaneumonidae), Termas de Río Blan-

co, prov. Malleco, VII-88.

— Braconidae sp. (Hymenoptera), Termas de

Río Blanco, prov. Malleco (ejemplar encon-

trado muerto en cámara pupal).

Neotaphos rachelis Fischer

—Sarcophagidae sp. (Diptera), Farellones,

prov. Santiago, X-89.

Calydon submetallicum (Blanchard).

— Pristaulacus sp. (sp. 2) (Hymenoptera: Aula-

cidae), Alto Vilches, prov. Talca, IX-88.

Calydon (Trichocalydon) haurylenkor Bosq.

— Pristaulacus sp. (sp. 2) (Hymenoptera: Aula-

cidae), Alto Vilches, prov. Talca, IX-88.

LAMIINAE

Estola hirsutella Aurivillius.

— Braconidae sp. (Hymenoptera), Nahuelbu-

ta, prov. Arauco, 1-89.

Oectropsis latifrons Blanchard.

— Braconidae sp. (Hymenoptera), Lo Vás-

quez, prov. Valparaíso, X-89.

Neohebestola luchopegna: Galileo.

—Notocymatodera sp. (Coleoptera: Cleridae),

Choros Bajos, prov. Elqui, X-88.

—Epiclimes puncticollas Spinola (Coleoptera:

Cleridae), Choros Bajos, prov. Elqui, XII-

89.

— Braconinae sp. (Hymenoptera: Braconi-

dae), Choros Bajos, prov. Elqui, X1-88.

Neohebestola uiticollas (Blanchard).

—Natalis laplaci Laporte (Coleoptera: Cleri-

dae), Choros Bajos, prov. Elqui.

Oectropsis latifrons Blanchard y/o Callideriphus

transversalis Philippi (crianza conjunta de

ambas especies).

—Proglochin maculipennas Philippi (Hymenop-

tera: Pteromalidae), Lo Vásquez, prov. Val-

paraíso, VII-89.

— Orussidae sp. (Hymenoptera), Lo Vásquez,

prov. Valparaíso, VII-89.

Cerambycidae sp.

— Eupelmidae sp. (Hymenoptera). Sin loca-

lidad.

BUPRESTIDAE

Conognatha costipenms Germain.

— Ppuparios (Diptera: Tachinidae), El Volcán,

prov. Cordillera.

Pygicera seripta (Laporte € Gory).

—Labena sp. (sp. 1) (Hymenoptera: Ichneu-

monidae), El Manzano, prov. Cordillera,

VII-89.

Dactylozodes conjuncta Chevrolat.

—Labena sp. (sp. 2) (Hymenoptera: Ichneu-

monidae), Naltagua, prov. Talagante, X-

89.

—Epiclines puncticollis Spinola (Coleoptera:

Cleridae), prov. Elqui, X-89.

Anthaxta maulica (Molina).

— Helconinae sp.? (Hymenoptera: Braconi-

dae), Peñuelas, prov. Valparaíso, XI-89.

— Orussidae sp. (Hymenoptera), Peñuelas,

prov. Valparaíso, X-88.

Mastogenius Sp.

— Torymidae sp.? (Hymenoptera), Naltagua, |

prov. Talagante, IX-88

ASPECTOS BIOLÓGICOS DE

PRISTAULACUS SP. (SP. 1)

(HYMENOPTERA, AULACIDAE),

Y CALLOTROXIS EDWARDSI

ALDRICH (DIPTERA, TACHINIDAE)

Se obtuvieron numerosos ejemplares de am- |

bas especies en crianzas de Hephaestion larios! |

Bosq. Los ejemplares obtenidos provienen de

la zona del Cajón del Maipo, provincia de Cor-

dillera (Región Metropolitana), localidades de |

El Manzano y San José de Maipo, principal-

Barriga: Parásitos y depredadores de Cerambycidae y Buprestidae 59

mente, en la primavera de 1989; también se

- obtuvieron ejemplares de otras localidades

ubicadas ente El Manzano (900 m) y El Volcán

(1.500 m). Con respecto a las primeras locali-

dades mencionadas, la presión de parásitos

era bastante fuerte, llegando en algunos casos

a más del 15% de las larvas atacadas por el

taquínido, y a casi el 10% de las larvas atacadas

por el himenóptero.

En algunos casos las larvas de cerambícidos

atacadas por Pristaulacus sp. cambiaron de co-

lor, desde el amarillo al naranjo; en otros,

permanecieron con su color original. En el

caso de las larvas anaranjadas, fue muy fácil

distinguirlas y separarlas de las restantes, y,

cuando no existió variación de color, sólo en la

semana previa a la pupación del parásito fue

posible conocer su grado de parasitación.

La larva de Pristaulacus se desarrolla rápi-

damente cuando la larva del cerambicido al-

canza su mayor tamaño, volviéndose esta últi-

ma más lenta en sus movimientos, aparentan-

do entrar en reposo antes que el resto de las

larvas de igual edad; sin embargo, en lugar de

pupar, permanece dos o tres semanas más en

forma de larva, y sólo en ese lapso es posible

confirmar la presencia del parásito, el cual

durante la última semana era completamente

visible a través del tegumento del cerambici-

do. La larva del parásito rompe el tegumento

del cerambícido, y en este estado da la impre-

sión de no poder desplazarse por la galería del

hospedante por sus propios medios, pues la

larva es completamente laxa. Luego de una

semana aproximadamente, el capullo está lis-

to y la larva cambia a pupa, estado en que

permanece durante tres a cuatro semanas,

hasta que emerge el adulto.

En el caso del Tachinidae las larvas de éstos

son visibles a través del tegumento del ceram-

bícido mucho tiempo antes de que se complete

su desarrollo.

En ambos casos la emergencia de los imagos

es de dos a tres semanas después de ocurrir la

de los hospederos.

AGRADECIMIENTOS

Al profesor Raúl Cortés por la identificación

del material de Tachinidae (Diptera), al Dr.

Charles Porter por la identificación del mate-

rial de Hymenoptera, al profesor Jaime Soler-

vicens por la identificación del material de

Cleridae (Coleoptera) depredadores, obteni-

dos de numerosas crianzas, al Dr. Roberto

González y al Sr. Mario Elgueta por la lectura

crítica del manuscrito.

LITERATURA CITADA

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Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 61-65

OBSERVACIONES BIOLÓGICAS SOBRE HOLOPTERUS ANNULICORNIS

F. PHILIPPI, 1859 (COLEOPTERA: CERAMBYCIDAE)

Thomas FicHer! y Juan EnrIQUE BARRIGA

RESUMEN

Se entregan antecedentes sobre la biología de Holopterus annulicornas F. Phil., como también las plantas

hospederas. Se comprobó además su presencia en la V Región, como también en la localidad de Alto de

Vilches (VII Región, prov. Talca).

ABSTRACT

Information concerning the biology of Holopterus annulicornis F. Phil. and its host plants is provided.

The occurrence of this insect was also detected in the V'” Region and in the Alto de Vilches locality in

the VII? Region, province of Talca.

INTRODUCCIÓN

F. Philippi en 1859 describió algunas especies

nuevas de Coleoptera de la provincia de Val-

divia, entre ellos Holopterus annulicornas Phil., a

la cual la catalogó como: *...uno de los insectos

raros de Valdivia...”.

Germain (1898) redescribe dicha especie y

cita como sinónimo de ésta a H. aranerpes F. et

G. (1859), además menciona como área de

dispersión para A. annulicornis Phil. a: Chiloé,

Valdivia, valle del Renaico, Talcahuano, Val-

paraíso y Quillota. A su vez califica a esta espe-

cie como: “...parece escasa en todos los puntos

de su extensa patria”.

Posteriormente, Bruch (1918) revisa el gé-

nero Holopterus, citando las localidades ante-

riormente nombradas por Germain (of. cit.), a

la que agrega la del Lago Argentino (prov.

Santa Cruz, Argentina).

Cerda (1986) entrega una lista de las espe-

cies de Cerambycidae de Chile con su distribu-

ción geográfica conocida, para el caso de HA.

anmulicornis la cita como presente desde Lina-

res hasta Chiloé.

El género Holopterus (s. str.) cuenta actual-

Facultad de Agronomía, Universidad de Chile, Casi-

lla 1004, Santiago-Chile.

2Ay. Colón 3386, Santiago - Chile.

(Recibido: 31 de julio de 1990. Aceptado: 5 de sep-

tiembre de 1990.)

mente con 3 especies: Holopterus (s.str.) chilen-

sis Bl., Holopterus (s.str.) laevigatus Phil., y Ho-

lopterus (s.str.) annulicornis Phil., llegando la

distribución de este último más al norte que las

dos anteriores.

MATERIALES Y MÉTODOS

Se capturaron ejemplares de esta especie, en

la zona costera de la V Región, entre las locali-

dades de Algarrobo por el sur y Zapallar por el

norte. Como también se reunieron anteceden-

tes suficientes como para conocer su biología y

plantas hospederas.

La zona estudiada comprende una flora es-

clerófita, con la presencia de Lithraea caustica

(Mol.) (litre), Maytenus boaria (Mol.) (maitén),

Peumus boldus Mol. (boldo), y Schinus latafolrus

(Gill.) Engler (molle), entre otros; pero tam-

bién existen plantas asociadas al sotobosque,

sin ser de este grupo propiamente tal, como

las Myrtaceae. A esta familia pertenecen algu-

nas especies que son hospederas de Holopterus

annulicornis Phil., de donde fueron criados al-

gunos ejemplares.

Este estudio se efectuó entre noviembre de

1988 y mayo de 1990, en este período se reali-

zaron varios muestreos para determinar el ci-

clo de vida de esta especie en esta zona, como

también determinar el tipo de daño que oca-

siona la larva al alimentarse.

62 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

Para este efecto se recolectaron ramas de

un diámetro normalmente menor de 2 cm,

que estaban secándose, en donde se ubicaba

una larva de alrededor de 0,5-0,7 cm de longi-

tud, estas ramas se encontraban tanto caídas

en el suelo, como también en la copa de los

árboles, en el caso de las especies arborescen-

tes como Myrceugenia exsucca (DC.) Berg. Ade-

más se recolectaron del suelo trozos de rami-

llas de 10-15 cm, conocidas localmente como

“tocones”, y que en su interior contenían al

momento de la colecta pupas, adultos o larvas

de 3,0-4,0 cm de longitud, las cuales pertene-

cerían al último estadio larvario, puesto que

luego de cortar el tocón no continúan alimen-

tándose, y luego de transcurrido cierto perío-

do mudan sólo una vez para transformarse en

pupa (esto es fácil de comprobar, pues en los

tocones vacíos sólo se encuentran un exuvio

de larva, y uno de pupa). Luego de ser recolec-

tadas se procedió a criarlas en laboratorio,

abriéndose un determinado número de rami-

llas, a intervalos de tiempo regular.

RESULTADOS

Se observó que este cerambícido vuela al

crepúsculo, alrededor de mirtáceas principal-

mente del género Mpyrceugemia, durante los

meses de primavera y verano. En dichas plan-

tas se detectó la presencia de ramas muertas y

en cuyo interior existían galerías que alcanza-

ban hasta 1 m de longitud. Por lo tanto, se

postuló la hipótesis de que Myrceugema sería

su planta hospedera.

El ataque de Holopterus annulicornas sobre

mirtáceas se realiza en plantas vivas, donde la

hembra ovipone en ramillas de aproximada-

mente 1,5 22 cm de diámetro. Al eclosionar, la

larva horada la rama en forma de espiral cóni-

ca en dirección siempre ascendente (Fig. 1),

con lo que interrumpe el flujo de savia, cau-

sando la muerte y posterior caída de la rama.

Luego la larva comienza a horadar una galería

en forma subcortical y ascendente por la rami-

lla muerta (en algunas ocasiones pueden pre-

sentarse galerías bifurcadas con los brazos pa-

ralelos, hechas por una sola larva, ver Fig. 2).

A medida que ésta aumenta de tamaño, pro-

duce una galería que ocupa prácticamente to-

do el interior de la ramilla, obteniéndose final-

Figura 1: Daño inicial de la larva.

Figura 2: Galerías paralelas producidas por una larva.

mente una galería que tiene un diámetro de

lla 1,5 cm de ancho y 0,5 a 0,7 cm de alto.

La larva forma una cámara pupal cortando

un trozo de 10 a 15 cm de la ramilla, y tapo-

nando con viruta las aberturas en ambos ex-

Fichet y Barriga: Observaciones biológicas de Holopterus annulicornis 63

tremos (Fig. 3); en esta cámara permanece un

tiempo en estado de larva, para luego pupar y

más adelante convertirse en adulto. El ciclo

completo duraría aproximadamente 15 me-

ses.

Con los resultados obtenidos se puede pro-

poner el siguiente ciclo biológico para esta

especie, para la zona en estudio (ver Fig. 4).

Observaciones del hábitat: Han sido colecta-

dos otros ejemplares de Holopterus annulicornis

Phil. volando al anochecer sobre plantas de

mirtáceas en las localidades de Las Trancas

(cordillera de Chillán, prov. de Nuble), en las

Termas de Río Blanco (cordillera de Malleco),

y en Alto de Vilches (cordillera de Talca, prov.

de Maule), lo cual confirmaría las plantas hos-

pederas de los ejemplares colectados y criados

en la V Región. También ello haría pensar que

este insecto tendría una distribución quizás

hasta la IV Región por la zona costera, debido

a que existen también en esta zona las plantas

hospederas.

La principal causa de muerte de esta espe-

cie antes de salir de las cámaras pupales, sería

por roedores, los cuales se alimentan de las

larvas, pupas o adultos que se encuentran al

interior de éstas, el daño producido por estos

mamíferos se detectó en las ramas caídas. En

los primeros estados larvarios la mortalidad

ocurre al parecer por deshidratación de la

rama en que están ubicadas.

Parásitos no fueron detectados en la zona

en estudio, a diferencia de la zona sur en que

se encontraron varias especies de Hymenop-

tera (Gauldianus porteri Lanfranco, y un Braco-

nidae no identificado). Esta especie es suma-

mente atacada en laboratorio por ácaros, al

parecer de la especie Pyemotes ventricosus

Newp., lo cual merma bastante las crianzas.

Holopterus annulicornis Phil. no sería una es-

pecie rara, las escasas colectas se deberían a

que no es atraído por la luz artificial, y a las

horas de vuelo de esta especie (crepúsculo y

parte de la noche, lo cual lo hace prácticamen-

te invisible).

Plantas hospederas: Hasta el momento no se

conocían los hospederos de esta especie, por lo

que aquí se hace entrega de los nombres de

aquellos en que se detectó ataque en terreno.

Todos los hospederos conocidos pertene-

cen a los géneros Myrceugenía y Myrteola, de la

familia Myrtaceae. En la zona en estudio se la

detectó atacando arbustos de Myrceugenia ob-

tusa (DC.) Berg. (arrayán, rarán), y Myrceuge-

ma rufa (Colla) Skottsb. (hitigu, arrayán, mal-

- Larva prepupa

- Pupa

- Adulto

- Emergencia adulto

Figura 4: Ciclo biológico de H. annulicornis Phil. en zona costera de la V Región.

64 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

tén), y árboles de Myrceugenia exsucca (DC.)

Berg (patagua, temu, petia, picha, pitra). En

otras zonas fueron detectados daños en arbus-

tos de Myrteola leucomyrtillus (Griseb.) Reiche

(daudapu, huarapo), Myrceugenza planipes (H.

et A.) Berg. (picha-picha, patagua de Valdivia,

pitra, pitrilla), Myrceugenía aff. ovata var. na-

nophyla (Burret) Landrum (arrayán), Myrceu-

gema aff. montana Kausel (arrayán), y Myrceu-

gema spp.

La distribución de M. exsucca en Chile es

bastante amplia, desde la zona costera de Co-

quimbo por el norte, hasta Aysén por el sur,

entrando a la zona cordillerana desde Curicó

al sur; el resto de las especies detectadas como

hospederos se superponen en distribución a la

de esta especie (Fig. 5); al sur de la provincia

de Aysén no se encontrarían estas especies ni

otras del género Myrceugenia, pero sí existiría

la especie Myrteola nummularia (Poir) Berg,

que se distribuye hasta Magallanes, la cual po-

dría ser el hospedero del ejemplar menciona-

do por Bruch (1918) obtenido de lago argenti-

no (50% 15” lat. Sur).

MATERIAL ESTUDIADO

(de norte a sur)

Criados de material del área de estudio

— Puente Santa Julia, Quintero, prov. Valpa-

raíso, 13-V-1990, leg. T. Fichet, 1 ej., colec-

tado en cámara pupal, ex Myrceugenta exsuc-

ca (DC.) Berg.

— Ritoque, prov. Valparaíso, X-1988, leg. J.E.

Barriga, 1 ej. ex cámara pupal en Myrceuge-

ma obtusa (DC.) Berg.

— Las Taguas, prov. Valparaíso, 111-1989,

leg. J.E. Barriga, 5 ej. ex cámara pupal en

Myrceugensa rufa (Colla) Skottsb. ex Kausel.;

IX-1989, leg. J.E. Barriga, 8 ej. ex Myrceuge-

ma exsucca (DC.) Berg.

—El Batro, prov. Valparaíso, 111-1990, leg.

J.E. Barriga, 4 ej. ex Myrceugenía rufa (Co-

lla) Skottsb. ex Kausel.

— Tunquén, prov. San Antonio, 14-IV-1989,

leg Eichec 20 o VELOSO leg T. Fi-

chet, 1 ej.; 10-V-1989, leg. T. Fichet, 1 ej.;

II1-1990, leg. J.E. Barriga, 5 ej.; todos los

ejemplares ex Myrceugenia rufa (Colla)

Skottsb. ex Kausel.

Figura 5: Mapa de distribución de Holopterus annulicornis

Phil. y de los hospederos conocidos (achurado).

Criados de otras localidades

— Alto de Vilches, prov. Talca, X-1988, leg.

J.E. Barriga, 3 ej., ex Myrceugenia sp.

— Puente Marchant, prov. Ñuble, X-1989,

leg. J.E. Barriga, 10 ej., ex Myrceugemia atf.

montana Kausel; X-1989, leg. J.E. Barriga, 2

ej., ex Myrteola leucomyrtillus (Griseb.)

Reiche.

— Termas de Río Blanco, prov. Malleco, IX-

1988, leg. J.E. Barriga, 9 ej., ex Myrteola

leucomyrtillus (Griseb.) Reiche; IX-1988, leg.

J.E. Barriga, 1 ej., ex Myrceugenia planipes

Fichet y Barriga: Observaciones biológicas de Holopterus annulicornis 65

(H. et A.) Berg.; IX-1988, leg. J.E. Barriga,

l ej., ex Myrceugenza aff. ovata var. nanophyla

(Burret) Landrum.

Adultos colectados

— Zapallar, prov. Petorca, X-1983, leg. J.E.

Barriga, 1 ej.

— Las Ventanas, prov. Valparaíso, 18-IX-

1971, M. Petilic (en col. MN HN).

—Paso del Agua, prov. Valparaíso, 30-XI-

1988, leg. R. Pérez de Arce, colectado sobre

flores de Lithraea caustica.

— Las Taguas, Peñuelas, prov. Valparaíso,

leg. J.L. Henríquez 1 ej.

— Alto de Vilches, prov. Talca, XI1-1984, leg.

J.E. Barriga, 1 ej.; 1-1986, leg. R. Pérez de

Arce, 2 ej.; XII-1987, leg. J.E. Barriga, 2 ej.

— Puente Marchant, prov. Ñuble, 21-1-1989,

leg. T. Curkovic, 1 ej., sobre Myrceugenta

aff. montana Kausel; 21-1-1989, leg. T. Fi-

chet, 5 ej., sobre Myrceugenia aff. montana

Kausel.

AGRADECIMIENTOS

Al profesor Gilberto Monsalve por su ayuda

desinteresada, con valiosos aportes en cuanto

a datos sobre la biología de esta especie, a don

Jorge Macaya por su asesoría botánica, y a don

Mario Elgueta por la lectura crítica del manus-

crito.

LITERATURA CITADA

Bruchn, C. 1918. Cerambícidos argentinos nuevos o poco

conocidos. Rev. Museo de la Plata, 24(2): 7-29.

CERDA, M. 1986. Lista sistemática de los cerambicidos

chilenos (Coleoptera. Cerambycidae). Rev. Chilena

Ent., 14: 29-39.

FAIrMAIRE, L. $e P. GERMAIN. 1859. Révision des coléopte-

res du Chili. Ann. Soc. Ent. Fr., 7: 483-532.

GERMAIN, P. 1898. Apuntes entomológicos (continua-

ción). An. Univ. Chile, 101: 781-815, lám. II.

PhiLtppr, F. 1859. Algunas especies nuevas de coleópteros

de la provincia de Valdivia. An. Univ. Chile 16: 656-

678.

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Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 67-81

CLAVE PARA LOS GÉNEROS DE ABEJAS DE CHILE

(HYMENOPTERA: APOIDEA)!

E. Chiarpa T.%, M. Rojas G-L? y H. Toro G.?

RESUMEN

En este trabajo se confecciona una clave para los géneros de abejas chilenas. Además de los géneros

indicados por Toro (1986), se reportan los siguientes para Chile: Aylaeus Fab. (Colletidae) y Ecclitodes

Roig-Alsina (Anthophoridae). Rophitulus Ducke y Anthrenoiwdes Ducke (Andrenidae), se incluyen tam-

bién en la fauna de nuestro país, así como Agapostemon Guérin-Méneville (Halictidae), que se ha

encontrado en la zona norte. Policana Friese se acepta como sinónimo de Cadeguala Reed (Colletidae),

de acuerdo a Michener (1986). Ruizantheda Moure y Ruizanthedella Moure (Halictidae), se consideran

como géneros válidos (Cure, 1989). Lonchopria (Colletidae) se mantiene, igualmente, como género

separado. Hemicotelles Toro y Cabezas y Xanthocotelles Toro y Cabezas, son tratados como subgéneros de

Mourecotelles Toro y Cabezas (Colletidae) siguiendo a Michener (1989).

ABSTRACT

This paper presents a key to the Chilean genera of bees. In addition to the genera listed by Toro

(1986), the following taxa are reported for Chile: Aylaeus Fab. (Colletidae) and Ecclitodes Roig-Alsina

(Anthophoridae). Rophitulus Ducke and Anthrenoides Ducke (Andrenidae) also are included in the

Chilean fauna, as well as Agapostemon Guérin-Méneville (Halictidae) in the north part of the country. In

agreement with Michener (1986), Policana Friese is regarded as a synonym of Cadeguala Reed

(Colletidae). Ruizantheda Moure and Ruizanthedella Moure (Halictidae), are considered as valid genera.

Lonchopria (Colletidae) is also maintened as a separate genus. Hemicotelles Toro y Cabezas y Xanthocote-

lles Toro y Cabezas are treated as subgenera of Mourecotelles Toro y Cabezas (Colletidae), following

Michener (1989).

INTRODUCCIÓN

La sistemática de las abejas chilenas se encuen-

tra bastante resuelta a nivel genérico y no se

esperan cambios importantes en los próximos

años gracias, principalmente, a los trabajos de

Michener (1944, 1948, 1954, 1965a-b, 1978,

1983, 1986, 1989), Michener et al. (1955,

1956, 1957), McGinley (1981, 1986), Eick-

worth (1969a-b), Mitchell (1934, 1943), Rozen

(1970, 1971) y otros autores norteamericanos;

Moure (1947, 1949, 1950, 1951, 1954a-b,

1964), Moure et al. (1956, 1987), en Brasil, y

algunos aportes de nuestro grupo de trabajo,

'Trabajo financiado por la Dirección de Investigacio-

nes de la Universidad Católica de Valparaíso.

?Laboratorio de Zoología, Universidad Católica de

Valparaíso, Casilla 4059, Valparaíso-Chile.

(Recibido: 8 de agosto de 1990. Aceptado: 5 de sep-

tiembre de 1990).

Toro (1976, 1980, 1981, 1986), Toro y Cabe-

zas (1977, 1978), Toro y Moldenke (1979),

Toro y Ruz (1969, 1972), Toro et al. (1989),

Ruz y Toro (1983), Ruz (1980).

Las excelentes claves de identificación de

géneros de Michener (1944), Mitchell (1960,

1962), y Stephen et al. (1969), facilitan el reco-

nocimiento de los grupos norteamericanos,

incluyendo un buen número de géneros chile-

nos, pero desafortunadamente dejan fuera un

considerable porcentaje que no puede ser

identificado. Lo mismo sucede con las claves

para las abejas australianas (Michener, 1965) y

de Panamá (Michener, 1954).

Esta relativa madurez en el conocimiento

sistemático del grupo y la necesidad de los

biólogos no especialistas en el área, que tra-

bajan con entomofauna chilena, particu-

larmente de personas preocupadas por las re-

laciones abeja-planta en el fenómeno de poli-

nización y de biólogos interesados en proble-

68 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

mas biogeográficos, demuestran la convenien-

cia de disponer de una clave de identificación,

a nivel de género, que ayude a solucionar sus

dificultades de clasificación.

La última lista de abejas chilenas publicada

(Toro, 1986), indica la presencia de las si-

guientes familias para Chile:

— Andrenidae (11 géneros)

— Anthophoridae (20 géneros)

— Apidae (2 géneros)

— Colletidae (13 géneros)

— Halictidae (8 géneros)

— Fideliidae (1 género)

— Megachilidae (6 géneros)

En relación a esta lista, se consideran las

siguientes modificaciones: representantes del

género Hylaeus Fab. (Colletidae) han sido re-

cientemente introducidos (Toro et al., 1989);

Rhophitulus Ducke y Anthrenoides Ducke (An-

drenidae), no habían sido citados anterior-

mente para Chile. Ecclitodes Roig-Alsina

(1989) (Anthophoridae), ha sido recientemen-

te creado para una especie descrita por Ruiz

(1935) como Epeolus stuarda.

Además, siguiendo las últimas ideas publi-

cadas por Michener (1986, 1989), se asimila

Policana Friese a Cadeguala Reed (Colletidae),

se separa a Lonchopria Vachal de Lezoproctus

Smith (Colletidae) y se consideran subgéneros

de Mourecotelles Toro y Cabezas a Hemicotelles

Toro y Cabezas y Xanthocotelles (Colletidae).

También se acepta la idea de Cure (1989) de

elevar a género a Ruizanthedella separándolo

de Ruizantheda (Halictidae).

Se ha incluido también el género Agaposte-

mon Guérin-Méneville (Halictidae), que se en-

cuentra representado en el extremo norte del

país por la especie A. nasutus (Ch.C. Porter,

com. personal).

Para facilitar el uso de la clave, se anota aquí

una lista de las familias consideradas, con sus

respectivos géneros en orden alfabético.

Andrenidae

— Acamptopeum Cockerell, 1905

— Anthrenoides Ducke, 1907

— Austropanurgus Toro, 1980

— Callonychium Brethes, 1922

—Euherbstia Friese, 1925

— Heterosarus Robertson, 1918

—Liopoeum Friese, 1906

—Liphanthus Reed, 1894

— Orphana Vachal, 1909

— Psaenytha Gerstaecker, 1868

— Pseudosarus Ruz, 1980

—Rhophitulus Ducke, 1907

— Spinohliella Ashmead, 1899

Anthophoridae

— Alloscirtetica Holmberg, 1903

— Anthophora Latreille, 1802

— Centris Fabricius, 1804

— Chilimalopsis Toro, 1976

— Diadasia Patton, 1879

—Doeningrella Holmberg, 1886

—Ecclitodes Roig-Alsina, 1989

— Eucerinoda Michener £ Moure, 1957

—Exomalopsis Spinola, 1853

— Isepeolus Cockerell, 1907

— Kelita Sandhouse, 1943

— Melissodes Latreille, 1829

—Melssoptila Holmberg, 1884

— Manuelia Vachal, 1905a

—Mesonychium Lep. et Serv., 1825

—Peponapis Robertson, 1902

— Svastra Holmberg, 1884

— Suastrides Michener, La Berge 8 Moure,

1955

— Tapinotaspiw Holmberg, 1903

— Thalestria Smith, 1854

— Xylocopa Latreille, 1802

Apidae

— Apis Linneo, 1758

— Bombus Latreille, 1802

Colletidae

— Cadeguala Reed, 1892

— Caupolicana Spinola, 1851

— Colletes Latreille, 1802

— Chilicola Spinola, 1851

—Chilimelissa Toro y Moldenke, 1979

— Diphaglossa Spinola, 1851

—Hoylaeus Fabricius, 1973

—Letoproctus Smith, 1853

—Lonchopria Vachal, 1905b

— Mourecotelles Toro y Cabezas, 1977

— Xenochilicola Toro y Moldenke, 1979

— Xeromelissa Cockerell, 1926

Chiappa et al.: Clave para géneros de abejas chilenas 69

Fideliidae

—Neofidelia Moure y Michener, 1955

Halictidae

— Agapostemon Guérin, 1844

— Caenohalictus Cameron, 1903

— Corynura Spinola, 1851

— Halictillus Moure, 1947

—Lasioglossum Curtis, 1833

—Penapis Michener, 1965

— Pseudagapostemon Schrottky, 1909

— Ruizantheda Moure, 1964

— Ruizanthedella Moure, 1964

— Sphecodes Latreille, 1804

Megachilidae

— Allanthidium Moure, 1947

— Anthidium Fabricius, 1804

— Coelioxys Latreille, 1809

— Megachile Latreille, 1802

— Notanthidium Isensee, 1927

— Trichothurgus Moure, 1949

MATERIALES Y MÉTODOS

Para la confección de la clave se ha estudiado

los ejemplares de la colección de la Universi-

dad Católica de Valparaíso, Universidad Me-

tropolitana de Ciencias de la Educación y Mu-

seo Nacional de Historia Natural de Santiago

de Chile. Además, uno de los autores (H. To-

ro) ha tenido la oportunidad de revisar mate-

rial de las siguientes instituciones norteameri-

canas: American Museum of Natural History,

Smithsonian Institution y Universidad de

Kansas.

Para facilitar el uso de la clave a las personas

que no son especialistas en el tema, la mayor

parte de los caracteres han sido representados

en esquemas, aunque no necesariamente en la

misma escala. Al final del texto se adjuntan las

leyendas de las figuras y el nombre del género

del que fueron dibujadas.

Se sigue, en general, la nomenclatura que

establece Michener (1965), para la descripción

de áreas, caracteres y medidas de las distintas

estructuras utilizadas en la clave.

Para visualizar algunos caracteres usados es

necesario, eventualmente, separar o remover

la pilosidad que cubre la estructura; en los

esquemas, estos caracteres aparecen con la pi-

losidad ya eliminada.

CLAVE PARA LAS FAMILIAS CHILENAS DE LA SUPERFAMILIA APOIDEA

1. Con una sutura subantenal (Fig. 1); cara generalmen-

telsinmmanchas claras A A. 2

— Con dos suturas subantenales (Fig. 2); cara general-

mente con manchas claras ....... ANDRENIDAE

2. Vena basal fuertemente curvada hacia la base del ala

(Fig. 3); abejas generalmente de color verde o azul

metálicos; glosa corta y triangular (Fig. 106), excepto

Rena pIS IO) IES HALICTIDAE

— Vena basal recta o muy levemente curvada hacia la

base del ala (Fig. 4), abejas generalmente de colores

no metálicos; glosa distinta a la anterior (Figs. 5 y 6) 3

3. Largo del área malar un cuarto o más del largo del ojo

(Fig. 7) ooo 4

— Area malar lineal o largo claramente menor que un

cuarto del largojdel ojo (Fig O) 4 da 5

4. Pterostigma pequeño, tan largo como ancho (Fig. 9);

glosa alargada (Fig. 5); hembras con corbícula tibial

E O e ala is e APIDAE

— Pterostigma grande, apreciablemente más largo que

ancho (Fig. 11); glosa bilobulada (Fig. 6); hembras sin

corbícula tibial (Fig. 12) (en parte) COLLETIDAE

5. Hembras con escopa abdominal solamente (Fig. 13),

ausente en Coelioxys; alas anteriores con dos células

submarginales; línea prepisternal ausente (Fig. 14)

A E a MEGACHILIDAE

70 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

— Hembras con escopa tibial (Fig. 15) o, abdominal y

tibial al mismo tiempo (Fig. 16); alas anteriores con

dos o tres células submarginales; línea prepisternal

presente, al menos en parte (Figs. 17 y 18) ..... 6

6. Machos con basitarsos posteriores modificados en for-

ma de garras (Fig. 19), hembras con escopa abdomi-

nal y tibial (Fig. 16); en hembras, basitarsos posterio-

res con una ancha banda longitudinal glabra (Fig. 20)

A A FIDELIIDAE (VEOFIDELIA)

— Machos con basitarsos sin modificaciones (Fig. 21);

hembras con escopa tibial (Fig. 15), si existe abdomi-

nal, es vestigial; sin banda glabra en basitarsos poste-

ore delas Men bra 7

7. Línea prepisternal completa (Fig. 18); glosa bilobula-

EM o le IS (en parte) COLLETIDAE

— Línea prepisternal presente sólo por sobre la escroba

(Fig. 17); glosa alargada, no bilobulada ...........

Sera is e a A IS EOS ANTHOPHORIDAE

—

. Célula marginal con ápice redondeado (Fig. 22). Ta-

manos upenon aL la. 2

— Célula marginal con ápice truncado (Fig. 23). Tama-

TO ieaor E 12 om. ooocoasococcocaoooaoaOoOs 3

2. Tergos metasómicos I1 y 111 con bandas rojas, fuerte-

mente contrastadas con el tegumento adyacente que

es negro-azulado. Suturas subantenales uniéndose

ventralmente (Fig. 24). Clípeo sin carina media ...

A A EUHERBSTIA

— Metasoma sin bandas rojas, tegumento negro. Suturas

subantenales subparalelas (Fig. 25). Clípeo con carina

EU de a al o aio RNE ORPHANA

3. Alas anteriores con tres células submarginales ... 4

— Alas anteriores con dos células submarginales ... 6

4. Tergos metasómicos IV y V con banda blanca bien

definida. Fémures posteriores con carina longitudinal

ema (a 218) oocavoncoosooposss PSAENYTHIA

— Tergos metasómicos IV y V sin banda blanca. Fému-

res posteriores sin carina longitudinal interna (Fig.

PR A A eE cios cuco ANA E ANITA de 5

Chiappa et al.: Clave para géneros de abejas chilenas 71

5. Pterostigma convexo (Fig. 28). Impresiones tentoria-

les no deprimidas. Machos con fuerte protuberancia

penal (big a2O) Mo. cari. e otise ANTHRENOIDES

' — Pterostigma cóncavo (Fig. 30). Impresiones tentoria-

les deprimidas. Machos sin protuberancia genal ...

O (en parte) LIPHANTUS

6. Antenas, en vista lateral, insertas aproximadamente

en la mitad de la cara (Fig. 31) ................ 7

' — Antenas, en vista lateral, insertas claramente bajo la

| mitad de la cara (Fig. 32) ...... CALLONYCHIUM

7. Distancia entre las suturas subantenales mayor o igual

al largo de la sutura subantenal interna (Fig. 33) 10

— Distancia entre las suturas subantenales claramente

menor al largo de la sutura interna (Fig. 34) .... 8

8. Paraoculares superiores protuberantes (Fig. 354).

Clípeo poco proyectado, de modo que la tangente

orbital inferior pasa por sobre la mitad de su largo

(E a) ia A E OD RHOPHITULUS

— Paraoculares superiores no protuberantes (Fig. 36A).

Clípeo poco proyectado, de modo que la tangente

orbital inferior pasa proximal a la mitad de su largo

(A A ss a e 2)

9. Órbitas internas paralelas. Machos con clípeo oscuro

AS a o e PSEUDOSARUS

— OÓrbitas internas convergentes. Machos con mancha

aAmanllatenelclipeo). arco HETEROSARUS

10. Longitud máxima de la célula marginal semejante a la

distancia desde su ápice al extremo del ala (Fig. 37).

Machos con esterno 11 proyectado en espina (Fig. 38)

A dt al (en parte) LIPHANTUS

— Longitud máxima de la célula marginal apreciable-

mente más larga que la distancia desde su ápice al

extremo del ala (Fig. 39). Machos con esterno II sin

SOMA 1005040 csm oO posa so doo ba dial 11

11. Labro ancho, sutura labroclipeal casi la mitad del an-

cho máximo del clípeo (Fig. 40). Metasoma gruesa-

mente punteado ........... AUSTROPANURGUS

— Labro angosto, sutura labroclipeal claramente menor

a la mitad del ancho máximo del clípeo (Fig. 41).

Metasoma con puntos ÍINOS .....oooooooooo... 12

12. Tergos metasómicos glabros. Órbitas internas diver-

gentes ventralmente o subparalelas (Fig. 42) ......

so bc y Els o A PTE SPINOLIELLA

— Tergos metasómicos con pilosidad larga y abundante.

Órbitas internas divergentes dorsalmente (Fig. 41) 13

13. Labro con fuerte quilla en el tercio distal (Fig. 43).

Machos sin proyección media en el esterno IV

(Ea a e Ade ACAMPTOPOEUM

— Labro con suave cordón transversal. Machos con fuer-

te proyección distal en esterno IV (Fig. 45) .. LIO-

POEUM

(Al

Rev. Chilena Ent. 18, 1990

CLAVE PARA GÉNEROS DE LA FAMILIA

ANTHOPHORIDAE

. Arolia ausente o reemplazado por peine de pelos

E Ma oa dd AR 2

ALO A PESCA O 4

. Primer antenito del flagelo más de dos veces el largo

del segundo (Fig. 47); espinas tibiales de patas medias

no especialmente modificadas ..........ooo..... 3

Primer antenito del flagelo de igual o menor largo que

el segundo (Fig. 48); espinas tibiales de patas medias

aca da O a MESONYCHIUM

. Célula marginal muy larga y estrecha, más de seis

veces más larga que ancha (Fig. 50); escapo largo, dos

veces el largo del primer antenito del flagelo (Fig. 51)

LA XYLOCOPA

Célula marginal menos de tres veces más larga que

ancha; escapo corto, aproximadamente la mitad o

poco más del largo del primer antenito del flagelo

(MESA lo oo o cla ro CENTRIS

. Manchas o bandas de pelos escamiformes en el tórax

y/o abdomen; hembras sin escopa tibial ......... 5

Sin manchas o bandas de pelos escamiformes en el

tórax y/o abdomen; hembras con escopa tibial ... 9

IConiuescelulasisubmarginales ae 6

Con dos células submarginales .......... KELITA

. Primera célula submarginal de largo semejante a la

Samunmaa (Ma. 30) heno t oso pasoo ds gear 7

Primera célula submarginal más larga que la segunda

(AN o ao la Eo A e 8

. Primer antenito del flagelo del mismo largo que el

segundo; triángulo propodeal microestriado ......

a ECCLITODES

Primer antenito del flagelo claramente más largo que

el segundo; triángulo propodeal no microestriado

O A old aid dare ISEPEOLUS

. Distancia interalveolar semejante O poco mayor a la

alveoloorbital (Fig. 55); pilosidad no azul brillante

A a titi DOERINGIELLA

Distancia interalveolar apreciablemente mayor que la

alveoloorbital (Fig. 56); pilosidad general azul brillan-

O pla o THALESTRIA

. Con tres células submarginales ............... 10

Con dos células submarginales, si hay tres, entonces la

segunda es rudimentaria o muy pequeña (Fig. 57)

ple Mi ts cs io ll tar A CHILIMALOPSIS

. Pterostigma grande, aproximadamente la mitad del

largo máximo de la célula marginal (Fig. 58) ... 11

Pterostigma pequeño, aproximadamente un cuarto o

menos del largo máximo de la célula marginal

MA dolo ala uiae dls sus 08 elo la 13

. Lóbulos pronotales no protuberantes; hembras con

placa pigidial (Fig..60) 000 12

Lóbulos pronotales protuberantes (Fig. 61); hembras

sin placa pride EL MANUELITA

Adal

de NS

M2.

23.

25.

Chiappa et al.: Clave para géneros de abejas chilenas

Segunda célula submarginal de forma casi triangular,

borde costal menos de la mitad del borde en la vena

mediana (Fig. 62); patas posteriores de los machos

con basitarsos comprimidos lateralmente (Fig. 63)

e nz eo is e TAPINOTASPIS

Segunda célula submarginal de forma cuadrangular,

borde costal 3/4 del borde en la vena mediana

(Fig. 64); patas posteriores de los machos con basitar-

sos sin Modificaciones ........... EXOMALOPSIS

. Célula marginal de menor tamaño que la primera

discoidal (Big6D) 2 eo cin ANTHOPHORA

Célula marginal de largo semejante a la primera dis-

A A O 14

. Primera submarginal semejante a la segunda .....

O o ios olla ld EUCERINODA

Primera submarginal claramente mayor que la segun-

A ies deceso tal lea tag 15

. Hembras (antenas con doce segmentos) ....... 16

Machos (antenas con trece segmentos) ......... 22

. Garras posteriores externas romas (Fig. 66) .......

E e tales o e e LONA DIADASTA

Garras posteriores externas agudas ........... 17

. Pterostigma más corto que el prestigma (medido so-

ETS AA AN 18

Pterostigma igual o poco más largo que el prestigma

(medido sobre R) (Fig. 68) ....... MELISSOPTILA

. Segunda célula submarginal claramente más angosta

que alta (midiendo su margen costal) (Fig. 69)... 19

Segunda célula submarginal tan o más ancha que alta

(midiendo su margen costal) (Fig. 70) ......... 20

. Cara interna de basitarsos con pelos uniformemente

densos; clípeo poco protuberante ALLOSCIRTETICA

Cara interna de basitarsos posteriores con pelos esca-

sos; clípeo fuertemente protuberante PEPONAPIS

. Borde lateral del clípeo casi alcanza la órbita y sin

A A A 21

Borde lateral del clípeo algo alejado de la órbita y con

CENAS 7 A SVASTRIDES

. Parte media transversal del segundo tergo abdominal

con bandas laterales de pilosidad clara MELISSODES

Parte media del segundo tergo abdominal sin bandas

laterales de pilosidad clara ............ SVASTRA

Sexto y séptimo esternos abdominales con dientes

MEA MA OS 0 23

Sexto y séptimo esternos abdominales sin dientes late-

rales Mie): AR LAIA ALDEA 24

Pterostigma de largo semejante o mayor que el pres-

tigma, medido sobre R (Fig. 75); palpos maxilares de

Gl08 O ES SIMSON hee a eunala nie MELISSOPTILA

Pterostigma más corto que el prestigma, medido so-

bre R (Fig. 76); palpos maxilares de más de tres seg-

MENO lea MELISSODES

24.Segundo segmento del flagelo tan largo como ancho

te o al O E A A OA DIADASTIA

Segundo segmento del flagelo 2 o más veces más largo

UE NO a a A ETS e E. AA! 25

Sexto esterno con carina convergente posteriormente

(As Lo aa Ne Ela O 26

Sexto esterno sin carina convergente posteriormente

A A A ALLOSCIRTETICA

Rev. Chilena Ent. 18, 1990

. Antenas poco más largas que el tórax ......... 2)

Antenas casi tan largas como el cuerpo ...........

A A ODE pa. delo SVASTRIDES

. Clípeo protuberante, casi toca la órbita; segunda célu-

la submarginal más ancha que alta (medida en el mar-

genicostal SVASTRA

Clípeo muy protuberante, alejado de la órbita; segun-

da célula submarginal más angosta que alta (medida

en el margen costal) (Fig. 79) ....... PEPONAPIS

A ol

ió a

CLAVE PARA GÉNEROS DE LA FAMILIA APIDAE

Lóbulo jugal del ala posterior la mitad o más del

lóbulo vanal (Fig. 80). Largo máximo de la célula mar-

ginal más del doble de la distancia de su ápice al

margen APIS

Lóbulo jugal del ala posterior ausente o claramente

menor que el lóbulo vanal (Fig. 82). Largo máximo de

la célula marginal semejante o menor a la distancia de

su ápice al borde del ala (Fig. 83) ....... BOMBUS

CLAVE PARA GÉNEROS DE LA FAMILIA COLLETIDAE

. Con tres células submarginales en el ala anterior

ESOS AA ds ds Rd le 2

Con dos células submarginales en el ala anterior

E A ill e 9

. Primer antenito del flagelo tres o más veces más largo

queelisegundo(Eligst) is CAUPOLICANA

Primer antenito del flagelo semejante o hasta dos

veces más largo que el segundo (Fig. 85) ........ 2)

. Área malar presente (Fig. 86A) ................ 5

Área malar lineal o casi lineal (SO) on 4

. Segunda célula submarginal tan larga como la tercera

REE IT LONCHOPRIA

Segunda célula submarginal más corta que la tercera

a A (en parte) LEIOPROCTUS

10.

Chiappa et al.: Clave para géneros de abejas chilenas

. Lóbulo yugal del ala posterior corto, claramente me-

nor que la mitad del largo del lóbulo vanal (Fig. 87) 6

Lóbulo yugal del ala posterior largo, la mitad o más

Alan ANS SARRIA 7

. Área malar poco menor que el largo del ojo (Fig. 89);

machos con una proyección media de pelos cortos

fuertemente recurvados en IV esterno abdominal

e O e AO A E DIPHAGLOSSA

Área malar aproximadamente un cuarto del largo del

ojo (Fig. 91); IV esterno abdominal de machos sin

DELS A A A CADEGUALA

. Segunda célula submarginal del ala anterior clara-

mente menor a la tercera; hembras con placa pigidial

(nera basitibral (Eig. 93) 2. 00m o PA repo >

os O A (en parte) LEIOPROCTUS

Segunda célula submarginal del ala anterior subigual

a la tercera; hembras sin placa pigidial y basitibial 8

. Propódeo con surco basal estriado (Fig. 94); segunda

recurrente incurvada (Fig. 95) ........ COLLETES

Propódeo con surco basal poco notorio o ausente;

segunda recurrente recta ..... MOURECOTELLES

. Primera célula submarginal del ala anterior a lo me-

nos un cuarto más larga que la segunda (Fig. 99) 10

Primera y segunda células submarginales de largo

SEMA (en parte) LEIOPROCTUS

Sutura epistomal bruscamente curvada hacia la parte

posterior (Fig. 96); pterostigma de lados paralelos en

elscetonsubmarginal (Fig. II 11

Sutura epistomal suavemente curvada hacia la base de

las mandíbulas (Fig. 98); pterostigma con lados diver-

gentes en el sector submarginal (Fig. 99) ...... 12

. Impresiones tentoriales proyectadas casi hasta el mar-

gen distal del clípeo (Fig. 96) ..... CHILIMELISSA

Impresiones tentoriales no proyectadas hasta el mar-

gen distal del clípeo (Fig. 100) .... XEROMELISSA

. Propódeo con parte basal oblicua o casi horizontal

(Fig. 101); órbitas internas emarginadas en su tercio

A CHILICOLA

Propódeo vertical o casi vertical (Fig. 102); órbitas

Internasicasiónectas Ed o 13

. Clípeo alargado, claramente proyectado distalmente

(a UA TA XENOCHILICOLA

Clípeo corto, poco proyectado distalmente (Fig. 104)

eras o A rd EA Y HYLAEUS

Rev. Chilena Ent. 18, 1990

CLAVE PARA GÉNEROS DE LA FAMILIA HALICTIDAE

. Glosa apreciablemente más larga que el largo de la

cabeza (Fig. 105A). Órbitas internas subparalelas

(Fig. 105). Margen superior del alvéolo antenal clara-

mente bajo la mitad de la cara (Fig. 105B) ........

A A a PENAPIS

Glosa apreciablemente más corta que el largo de la

cabeza (Fig. 106A). Órbitas internas convergentes

ventralmente (Fig. 106). Margen superior del alvéolo

antenal a la misma altura o sobre la mitad de la cara

(Ed. o 2

. Orbitas internas casi rectas. Tegumento torácico ex-

tremadamente rugoso. Hembras sin escopa tibial ..

a o o SPHECODES

Órbitas internas emarginadas (Fig. 106). Tegumento

torácico no rugoso. Hembras con escopa tibial .. 3

. Ojos con pilosidad, escasa en algunos ejemplares

E O o 8

Ojala A O AiO Al 4

. Cara posterior del propódeo con una conspicua cari-

na semicircular aguda .......... AGAPOSTEMON

Cara posterior del propódeo sin carina semicircular

AGUA A 1 o oros A 5

. Tercera célula submarginal del ala anterior, por lo

general, débilmente definida (Fig. 107). Hembras con

placa basitibial definida anterior y posteriormente

por carina (Fig. 108). Machos con el último tergo do-

blado ventralmente hacia adelante, de modo que es

visiblejentvista ventral (Eg. LO oo

A o LASIOGLOSSUM

Tercera célula submarginal del ala anterior bien defi-

nida. Hembras con placa basitibial rudimentaria o

definida sólo por carina posterior (Fig. 110). Machos

con último tergo no doblado anteriormente ..... 6

. Escutelo y área media de tergo metasómicos 1 y II con

punteado denso y bien marcado. Machos con clípeo

¿MA e A PSEUDAGAPOSTEMON

Escutelo y área media de tergos metasómicos 1 y II

lisos o con puntos poco marcados (excepto en Corynu-

ra chilensis). Machos con clípeo oscuro o, en algunas

especies, con sólo una línea amarilla distal ...... 7

. Segmentos laterales de la sutura epistomal suavemen-

teincurvados (Fig. 111). En machos, segmentos meta-

sómicos de lados no paralelos formando un abdomen

peciolado (Fig. 112). En hembras, espinas tibiales de

las patas posteriores serradas (Figs. 113A y B) ....

O NA E CORYNURA (Corynura)

Segmentos laterales de la sutura epistomal abrupta-

mente incurvados (Fig. 114). En machos, segmentos

metasómicos de lados paralelos, de modo que el abdo-

men no parece peciolado (Fig. 115). En hembras, es-

pinas tibiales de las patas posteriores lameladas

(es IICA HALICTILLUS

us)

CN ==

10.

Chiappa et al.: Clave para géneros de abejas chilenas

Machos con áreas amarillas en clípeo y patas. En hem-

bras, área pseudopigidial del tergo V sin surco medio

longitudinal (Fig. 117) y espinas metatibiales con

dientes laminares de ápices redondeados ....... 9

Machos sin áreas amarillas o solamente una línea dis-

tal en el clípeo. Hembras con surco longitudinal en el

área pseudopigidial del tergo V (Fig. 118) y espinas

metatibiales con dientes de ápice agudo ....... 10

. Cuerpo sin brillo metálico. Machos: con margen distal

del labro truncado (Fig. 119); mandíbulas simples,

dilatadas en la base (Fig. 120); VII tergo profunda-

mente emarginado. Hembras: con área basal del pro-

pódeo con puntuación fina y carina redondeada muy

marcada (Elpr121)...... 2.2 %.- RUIZANTHEDA

Cuerpo con brillo metálico (a lo menos cabeza y tó-

rax). Machos: con margen distal del labro angulado

(Fig. 122); mandíbulas con dos dientes (Fig. 123); VII

tergo poco emarginado. Hembras: con área propo-

deal microestriada y carina poco marcada (Fig. 124)

¿ada de E AR O RUIZANTHEDELLA

Sector lateral de la sutura epistomal fuertemente an-

gulada (Fig. 125). Machos con último tergo doblado

ventralmente, con fuerte carina transversal. Hem-

bras, en vista dorsal, con base del propódeo de largo

semejante o mayor que el largo del escutelo (Fig. 126)

E a a A CAENOHALICTUS

Sector lateral de la sutura epistomal suavemente in-

curvada. Machos con último tergo no doblado ven-

tralmente y sin carina transversal. Hembras, en vista

dorsal, con base del propódeo mayor que el escutelo

A CORYNURA (Callochlora)

CLAVE PARA GÉNEROS DE LA FAMILIA

MEGACHILIDAE

Lóbulo jugal de alas posteriores la mitad o poco más

de la mitad del largo del lóbulo vanal (Fig. 128); pri-

mer tergo metasómico corto, con margen posterior

redondeado (Fig. 129A); hembras con placa pigidial

(A e e: TRICHOTHURGUS

Lóbulo jugal de alas posteriores un tercio o menos del

lóbulo vanal; primer tergo metasómico normal, con

margen posterior recto (Fig. 130); hembras sin placa

ME Md alto. 2

E IN 3

CNA NA 5

3. Prestigma pequeño, tan largo como ancho ........

a IS e INE o AAA). ye ANTHIDIUM

— Prestigma grande, más largo que ancho ........ 4

ON,

A |

WAY

7 1)

)

Rev. Chilena Ent. 18, 1990

4. Ojos con pelos; axilas terminadas en espinas

(Fig. 131); hembras sin escopa abdominal

COELIOXYS

Ojos sin pelos; axilas redondeadas (Fig. 132); hem-

bras con escopa abdominal (Fig. 13)

Clípeo truncado a nivel de la sutura labroclipeal, con

extremos cercanos a las órbitas (Fig. 133); mesonoto

más largo quefancho (Ela 134 a ole e

O. IT A NOTANTHIDIUM

Clípeo redondeado a nivel de la sutura labroclipeal,

con extremos separados de las órbitas (Fig. 138); me-

sonoto tan largo como ancho (Fig. 136)

Figura 1.

Figura 2.

Figura 3.

Figura 4.

Figura 5.

Figura 6.

Figura 7.

Figura 8.

Figura 9.

Figura 10

Figura 11

Figura 12

Figura 13

lateral.

Figura 14

ALLANTHIDIUM

LEYENDAS DE FIGURAS

Doerimgrella. Cabeza vista frontal.

Acamptopoeum. Cabeza vista frontal.

Corynura. Ala anterior.

Megachale. Ala anterior.

Apis. Lengua, vista dorsal.

Colletes. Lengua, vista dorsal.

Colletes. Cabeza, vista lateral.

Doeringrella. Cabeza, vista lateral.

Bombus. Detalle ala anterior.

. Apis. Tibia del 3% par de patas.

. Colletes. Detalle ala anterior.

. Colletes. Tibia del 3% par de patas.

. Megachale. Metasoma y 3% par de patas, vista

. Megachile. Tórax, vista lateral.

Figura 15. Colletes. Metasoma y 3% par de patas, vista

lateral.

Figura 16.

Figura 17.

Figura 18.

Figura 19.

Figura 20.

Figura 21.

Figura 22.

Figura 23.

Figura 24.

Figura 25.

Figura 26.

Figura 27.

Figura 28.

Figura 29.

Figura 30.

Neofidelia. Macho, detalle patas posteriores.

Doerimgrella. Tórax, vista lateral.

Colletes. Tórax, vista lateral.

Neofidelia. Hembra, detalle patas posteriores.

Colletes. Hembra, detalle patas posteriores.

Euherbstra. Detalle ala anterior.

Liphantus. Detalle ala anterior.

Euherbstia. Cabeza, vista frontal.

Orphana. Cabeza, vista frontal.

Psaenythia. Detalle 3% par de patas.

Anthrenoides. Detalle 3% par de patas.

Anthrenoides. Detalle ala anterior.

Anthrenoides. Macho, cabeza, vista lateral.

Liphantus. Detalle ala anterior.

Figura 31.

Figura 32.

Figura 33.

Figura 34

Figura 35.

Figura 36.

Figura 37.

Figura 38.

Figura 39.

Figura 40.

Figura 41.

Figura 42.

Figura 43.

Figura 44.

ventral.

Figura 45.

tral.

Figura 46.

Figura 47.

Figura 48.

Figura 49.

Figura 50.

Figura 51.

Figura 52.

Figura 53.

Figura 54.

Figura 55.

Figura 56.

Figura 57.

Figura 58.

Figura 59.

Figura 60.

Acamptopoeum. Cabeza, vista lateral.

Callonychium. Cabeza, vista lateral.

Acamptopoeum. Cabeza, vista lateral.

. Heterosarus. Cabeza, vista frontal.

Rophitulus. Cabeza, vista lateral.

Heterosarus. Cabeza, vista lateral.

Liphantus. Ala anterior.

Liphantus. Macho, metasoma vista lateral.

Austropanurgus. Ala anterior.

Austropanurgus. Cabeza, vista frontal.

Acamptopoeum. Cabeza, vista frontal.

Spinohiella. Cabeza, vista frontal.

Acamptopoeum. Cabeza, vista lateral.

Acamptopoeum. Macho, detalle metasoma, vista

Liopoeum. Macho, detalle metasoma, vista ven-

Mesonychium. Pretarso, vista ventral.

Xylocopa. Antena.

Mesonychitum. Antena.

Mesonychium. Espina 2” par de patas.

Xylocopa. Detalle ala anterior.

Xylocopa. Antena.

Centnis. Antena.

Isepeolus. Detalle ala anterior.

Doerimgnella. Detalle ala anterior.

Doerimgrella. Cabeza, vista frontal.

Thalestria. Cabeza, vista frontal.

Chilimalopsis. Detalle ala anterior.

Manuelia. Detalle ala anterior.

Alloscirtetica. Detalle ala anterior.

Tapinotaspis. Detalle metasoma.

Chiappa et al.: Clave para géneros de abejas chilenas 79

Figura 61. Manuela. Tórax, vista dorsal.

Figura 62. Tapinotaspis. Detalle ala anterior.

Figura 63. Tapinotaspis. Macho, detalle de tarsos.

Figura 64. Exomalopsis. Detalle ala anterior.

Figura 65. Anthophora. Detalle ala anterior.

Figura 66. Diadasia. Garras de patas posteriores, vista

dorsal.

Figura 67. Melissodes. Hembra, detalle ala anterior.

Figura 68. Melissoptila. Hembra, detalle ala anterior.

Figura 69. Peponapis. Hembra, detalle ala anterior.

Figura 70. Svastra. Hembra, detalle ala anterior.

Figura 71. Svastra. Hembra, cabeza vista semilateral.

Figura 72. Svastrides. Hembra, cabeza vista semilateral.

Figura 73. Melissodes. Macho, últimos tergos metasómicos,

vista ventral.

Figura 74. Svastrides. Macho, últimos tergos metasómicos,

vista ventral.

Figura 75. Melissoptila. Macho, detalle ala anterior.

Figura 76. Melissodes. Macho, detalle ala anterior.

Figura 77. Svastrides. Macho, últimos tergos metasómicos,

vista ventral.

Figura 118.

dorsal.

Figura 119.

Figura 120.

Figura 121.

rior.

Figura 122.

Figura 123.

Figura 124.

terior.

Figura 125.

Figura 126.

Figura 127.

Figura 128.

Figura 129.

Figura 130.

Figura 131.

Figura 132.

Figura 133.

Figura 134.

Figura 135.

Corynura. Hembra, detalle metasoma, vista

Ruizantheda. Macho, labro.

Ruizantheda. Macho, mandíbula derecha.

Ruizantheda. Hembra, propódeo, vista poste-

Ruizanthedella. Macho, labro.

Ruizanthedella. Macho, mandíbula derecha.

Ruizanthedella. Hembra, propódeo, vista pos-

Caenohalictus. Cabeza, vista lateral.

Caenohalictus. Tórax y propódeo, vista dorsal.

Corynura. Tórax y propódeo, vista dorsal.

Trichothurgus. Ala posterior.

Trichothurgus. Detalle metasoma, vista dorsal.

Megachile. Detalle metasoma, vista dorsal.

Coelioxys. Tórax, vista dorsal.

Megachale. Tórax, vista dorsal.

Notanthidium. Cabeza, vista frontal.

Notanthidium. Pretarso, vista dorsal.

Allanthidium. Tórax, vista dorsal.

Figura 78.

Figura 79.

Figura 80.

Figura 81.

Figura 82.

Figura 83.

Figura 84.

Figura 85.

Figura 86.

Figura 87.

Figura 88.

Figura 89.

Figura 90.

Figura 91.

Figura 92.

Figura 93.

Figura 94.

Figura 95.

| Figura 96.

Figura 97.

Figura 98.

Figura 99.

Svastra. Macho, detalle ala anterior.

Peponapas. Macho, detalle ala anterior.

Apis. Ala anterior.

Apis. Detalle ala anterior.

Bombus. Ala anterior.

Bombus. Detalle ala anterior.

Caupolicana. Antena.

Diphaglossa. Cabeza, vista lateral.

Colletes. Cabeza, vista lateral.

Cadeguala. Ala posterior.

Colletes. Ala posterior.

Diphaglossa. Cabeza, vista lateral.

Diphaglossa. Macho, metasoma vista ventral.

Cadeguala. Cabeza, vista lateral.

Letoproctus. Detalle metasoma, vista dorsal.

Lezoproctus. Tibia posterior.

Colletes. Propódeo, vista lateral.

Colletes. Ala anterior.

Chilimelissa. Cabeza, vista frontal.

Chilimelissa. Detalle ala anterior.

Chilicola. Cabeza, vista frontal.

Chilicola. Detalle ala anterior.

Figura 100. Xeromelissa. Cabeza, vista frontal.

Figura 101.

Figura 102.

Figura 103.

Figura 104.

Figura 105.

Figura 106.

Figura 107.

Figura 108.

Figura 109.

| ventral.

| Figura 110.

| Figura 111.

Figura 112.

Figura 113.

Figura 114.

Figura 115.

Chilicola. Vista lateral.

Hylaeus. Vista lateral.

Xenochilicola. Cabeza, vista lateral.

Hylaeus. Vista lateral.

A y B Penapis. Cabeza, vista frontal.

A y B Corynura. Cabeza, vista frontal.

Lasioglossum. Detalle ala anterior.

Lasioglossum. Tibia 3% par de patas.

Lasioglossum. Macho, detalle metasoma, vista

Corynura. Tibia 3% par de patas.

Corynura. Cabeza, vista lateral.

Corynura. Macho, metasoma, vista dorsal.

Corynura. Hembra, espinas 3% par de patas.

Halictillus. Cabeza, vista lateral.

Halctillus. Macho, metasoma vista dorsal.

Figura 116. Halictillus. Hembra, espinas 3%" par de patas.

| Figura 117.

Ruizanthedella. Abdomen, vista dorsal.

Figura 136.

Figura 137.

Figura 138.

Notanthidium. Tórax, vista dorsal.

Anthidium. Pretarso, vista dorsal.

Allanthidium. Cabeza, vista frontal.

AGRADECIMIENTOS

Expresamos nuestros más sinceros agradeci-

mientos al profesor Jaime Solervicens, de la

Universidad Metropolitana de Ciencias de la

Educación, y al Dr. Charles C. Porter, de la

Universidad de Fordham de Estados Unidos,

por la cuidadosa lectura crítica y las interesan-

tes sugerencias al manuscrito. También agra-

decemos al Dr. Charles D. Michener, de la

Universidad de Kansas, al Dr. Jerome G. Ro-

zen Jr., del Museo de Nueva York, y al Dr.

Ariel Camousseight, del Museo de Historia

Natural de Santiago, por haber permitido la

revisión de las respectivas colecciones a su

cargo.

Deseamos destacar la colaboración inesti-

mable de la Sra. Carmen Tobar, quien elaboró

los esquemas.

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(BLANCH.) GUIMARAES, 1971 (DIPTERA: TACHINIDAE)

ON NEZARA VIRIDULA (L.) 1758 (HEMIPTERA: PENTATOMIDAE)'

Norma C. La Porra?

ABSTRACT

Natural parasitism of adult southern green stink bug Nezara viridula (L.) 1758 by Trichopoda giacomellú

(Blanch.) Guimaraes, 1971, was evaluated in the field. Percentage parasitism and parasitoid egg

distribution on the host, were assessed on various host plants in a 3-year study. Validity of parasitoid

egg presence on the host surface as an indicator of parasitism was also studied.

Parasitism percentage was higher for N. viridula males than for females. This trend was consistent

over a variety of host plants.

Mean numbers of parasitoid eggs and larvae were similar on both males and females of N. vindula.

Supernumerary oviposition by 7. giacomelli was common on both sexes.

Rates of parasitism varied among different host plants and among years.

Parasitoid egg presence on the host surface was shown to be a valid indicator of parasitism of N.

viridula by T. giacomella.

RESUMEN

Se evaluó en campo el parasitismo natural de la chinche verde común Nezara vindula (L.) 1758 por

Trichopoda giacomellii (Blanch.) Guimaraes, 1971. Durante tres años de estudio en diferentes cultivos se

determinó el porcentaje de parasitismo y la distribución de huevos del parasitoide sobre el hospedante.

También se estudió la validez de la presencia del huevo del parasitoide sobre la superficie del

hospedante como indicador de parasitismo.

El porcentaje de parasitismo fue mayor en machos de N. viridula que en hembras. Esta tendencia se

manifestó en varios cultivos.

El número medio de huevos y larvas parasitoides fue similar en machos y hembras de N. viridula. La

oviposición supernumeraria por T. giacomellii fue común en ambos sexos.

Las tasas de parasitismo variaron entre los diferentes cultivos y entre años.

La presencia del huevo parasitoide sobre la superficie del hospedante resultó ser un indicador

válido de parasitismo.

INTRODUCTION

Trichopoda giacomelli: (Blanch.) Guimaraes,

1971, is a natural parasitoid on the adult sout-

¡hern green stink bug, Nezara viridula (L.) 1758

'This paper was presented at 1 Argentine Congress of

Entomology, April 1987, S.M. Tucumán, Argentina.

“Centro de Investigaciones Entomológicas de Córdo-

ba (ciec), Av. V. Sarsfield 299, 5000 - Córdoba, Argenti-

na. Present address: Facultad Cs. Agropecuarias, Univer-

sidad Nacional de Córdoba, C.C. 509-5000 Córdoba, Ar-

gentina.

(Recibido: 4 de septiembre de 1990. Aceptado: 9 de

octubre de 1990.)

in Argentine. In the absence of adults it para-

sites nymphs of 4'” and 5'” instars.

Trichopoda deposits its eggs on the body sur-

face of the bug. Although eggs may be deposi-

ted on almost any part of the host, including

the appendages, wings, eyes, etc., they are pla-

ced predominantly either dorsally or ventra-

lly, on the prothoracic margin (La Porta,

1987). After hatching, the larva penetrates

into the host and feeds on the internal organs

and body fluids of the host. Supernumerary

oviposition is common although only one lar-

va develops within the body of the host. At

maturity the larva forces its way out at the

posterior end of the bug. The host dies within

84 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

a day or two after the emergence of the parasi-

toid. The parasitoid then pupates in the soil.

Biology and behavior of T. giacomellii are

similar to the better known and widely distri-

buted Trichopoda pennipes Fabricius. Worthley

(1924), Shahjahan (1968a, b) and Mitchell éc

Mau (1971) studied the biology and behavior

Of T. pennipes and Todd $ Lewis (1976) deter-

mined its incidence on N. viridula populations.

Numerous attempts on biological control of

N. viridula have been made with artificially

propagated and released adults of T. pennmipes.

Results have generally been favourable but

not spectacular (De Bach, 1962; Davis, 1964;

1967).

In Argentine, Liljesthróm (1980), La Porta

£ Crouzel (1984) and LaPorta (1987) studied

biological aspects of T. giacomellia, but little

information (Molinari et al., 1987) is available

in the literature on the impact of this parasite

as a natural control agent for N. viridula.

Theses studies were conducted to evaluate

T. giacomellar parasitism on N. viridula popula-

tions in the field and on different host plants.

On the other hand, the validity of estimating

percentage parasitism using parasitoid egg

presence as an indicator was assessed.

MATERIALS AND METHODS

Adults of N. viridula were manually collected

from several host plants in different places

during 1982, 1983 and 1984. The adult bugs

were brought to the laboratory and placed in

33 x 33 x 33 cm cages, made of plastic mesh

(0.2 mm +) over a wooden frame. Insects were

provided with fresh fruits of Phaseolus vulgaris

(L.), changed every 48 hours. Dead bugs and

emerged parasitoids were removed from the

cages daily until all insects died.

Each individual was sexed, examined for

the presence of T. giacomellú eggs on the tegu-

ment, dissected and examined internally for

the presence of parasitoid larvae. In every

instance the following data were taken concer-

ning each group: date of collection, host plant,

total number of individuals of each sex, total

numbers of parasitized and non-parasitized

individuals of each sex, number of parasitoid

eggs per host and number of parasitoid larvae

per host. A “'' test was conducted for each

variable to determine whether differences

existed between males and females. The per-

centage of insects with parasitoid eggs and the

mean number of eggs per host were determi-

ned for each sex and for each crop. A *' test

was conducted on males, females, and males

plus females collected from different crops to

determine if differences existed between rate

of parasitism and mean number of eggs per

host. The percentage of parasitism was analy-

zed by Chi-square test (X*).

Dissected N. viridula were examined under

a binocular microscope. The classification into

truly parasitized or not parasitized was based

on the presence of the tracheal funnel, a scle-

rotized structure which adheres to the host's

tracheal trunk and surrounds the posterior

end of the larva during the parasitism period.

Absence of a tracheal funnel is usually suffi-

cient evidence for absence of parasitism. Ot-

her signs taken into consideration were: lar-

vae's presence or their remainders (cephalop-

haryngeal skeletons); abdomen with empty

appearance due to reduction of fat bodies and

internal organs. Externally, a black stain in the

genital region and genital sclerites distorted

(specially in males) are also indicators of para-

sitism; both characteristics being produced by

the larva emergency.

The validity of estimating percentage para-

sitism Of N. viridula by T. giacomellia, by using

the presence or absence of parasitoid eggs was

determined by procedures described by Ha-

rris e Todd (1981) for T. penmipes. Apparent

parasitism (determined by egg presence/ab-

sence) and actual parasitism (determined by

dissection) were compared and the frecuency

of right/wrong designations was established.

Data were analyzed by Chi-square test.

During the studies the laboratory condi-

tions were maintained at 26% + 2%C; 70% +

10% R.H., and a 16 h photophase.

RESULTS AND DISCUSSION

Table 1 summarizes male and female bug co-

llections and percent parasitism by T. giacome-

llaz on several host plants in 1982-84. Parasi-

tism percentage on male bugs was higher

(42.1%) than on females bugs (30.1%), except

on soybean, Glycine max (L.) Merril, where the

difference between sexes was not significant

(P>0.01). Similar data were obtained by Mit-

La Porta: Parasitism by Trichopoda giacomelli on Nezara viridula 85

TABLE 1

PARASITISM OF NEZARA VIRIDULA BY TRICHOPODA GIACOMELLIT ON VARIOUS

ALTERNATE HOSTS

X?=Chi-Square.

chell ££ Mau (1971) and Todd €: Lewis (1976)

for T. penmipes. They postulated the existence

of a male stink bug pheromone highly attracti-

ve not just to the female stink bug but to the

tachinid female parasitoid as well.

The parasitism's percentage of males, fe-

males and total of insects captured was signifi-

cantly different (P<0.01) between the diffe-

rent crops and among years. Total percenta-

ges were 45.3%, 42.1%, 29.9% y 27.9% on

sorghum (Sorghum vulgare L.), flax (Linum us:-

tatissimun L.), wheat (Triticum aesttvum L.) and

soybean, respectively.

Parasitism percentage was higher on those

crops where the fruiting structures were more

exposed. These observations are in agree-

ment with those reported by Todd 8: Lewis

(1976). According to these authors, behavior

could be explained by the differential accessi-

bility of the bugs to the parasitoid considering

that the fruiting structures are the preferred

feeding site of N. viridula. This three-trophic

level relationship deserves further study.

Table 2 shows results on patterns of parasi-

toid egg distribution on N. viridula. Although

the male bugs had a higher percent parasitism

and the tendency was towards higher number

of parasitoid eggs per male host, the mean

catión On Host N? bugs collected % parasitism X*(a)

date CHOP Total 3d 29 3d 99

Rafaela 16/1V/82 Sorghum 494 244 250 90.6 ILINO:4S

Manfredi 21/1V/82 Soybean 122 60 62 30.0 ZO ON

Rafaela 27/1/83 Sorghum 240 150 90 20.7 ZO

Rafaela 4/11/83 Sorghum 344 181 163 49.7 e

Manfredi 22/11/83 Sorghum 49 20 29 55.0 E

Rafaela 23/11/83 Sorghum 1 102 513 589 43.7 28.0 29.4**

La Banda 17/111/83 Soybean 75 35 40 25.7 40.0 17

La Banda 25/111/83 Soybean 40 17 23 35.3 IOATOS

La Banda 6/1V/83 Soybean 18 36 39 8.3 ZO ZAZ

Manfredi 17/X/84 Wheat 87 43 44 41.9 LS RDES

Manfredi 25/X/84 Flax 209 76 133 62.5 ZOO ES

Totales 2 837 1375 1 462 42.1 30.1

(a) df=1

*P<0.05

**P<0.01

number of eggs per host was not significantly

different (P>0.01) between sexes. The mean

number of parasitoid eggs per host was signi-

ficantly higher (P<0.05) for the insects captu-

red on sorghum.

Supernumerary oviposition by T. giacomella

on N. viridula was common on both males and

females. Out of 677 males bearing parasitoid

eggs, 20.5, 9.9, and 20.1% had 2, 3 and 4 or

more eggs, respectively. One male was obser-

ved with 26 eggs. Out of 532 parasitized fema-

les examined, 19.9, 10.7 and 21.6% had 2, 3

and 4 or more eggs, respectively, and up to 16

eggs were found on a single female. The large

number of eggs which sometimes are deposi-

ted on individual hosts suggests that the pre-

sence of previously laid eggs has little or no

deterrent effect on parasitoid oviposition.

This tendency would be a disadvantage for

the parasitoid since only one adult emerges

from each parasitized bug. According to Flan-

ders (1947), an efficient parasitoid must be

able to distinguish a parasitized host from a

non-parasitized one. Shahjahan (1968b) con-

siders that multiple oviposition may have so-

me positive survival value for the parasitoid

tachinid because it would increase the percen-

tage of successful penetration of larvae.

86 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

TABLE 2

EGG DISTRIBUTION OF TRICHOPODA GIACOMELLII ON NEZARA VIRIDULA

COLLECTED FROM VARIOUS HOST PLANTS

Sex N? bugs N* bugs N? x eggs/ N? eggs of Trichopoda/bug

collected parasitized pst. bug(b) 1 2 3 4 -

% pst. bugs

1982

3d 304 239 Sl 20.1 22.6 13.0 10.5 33,9

SE SL 227 3.5 2240 20.3 15.4 114 30.4

1983

dd 952 374 1.6 66.8 19.0 8.8 2.9 2.4

So 973 256 11-43) 68.0 19.1 7.8 950 1.6

1984

3d 119 64 1.9 57.8 21.9 4.7 7.8 7.8

E 177 49 19) 92 22.4 4.1 6.1 8.2

Total 3 g 1375 677 2.4(a) 49.5 20.5 9.9 60 14.0

Total $ $ 1 462 532 2.3(a) 47.7 19.9 10.7 7/eSl 14.5

(a)There is no difference between sexes (t'=1.66; P>0.01; df=1 207).

(b)pst.=parasitized.

In laboratory, 62.5% + 0.06% of T. giacome- Pooling all collections, only 12.7% of desig-

lla larvae penetrated successfully. The mean nations of bugs bearing parasitoid eggs as pa-

numbers of larvae per host (x=2.2; r=1-7) rasitized were wrong. Likewise, in designating

did not differ (P>0.01) between sexes. After bugs without parasitoid eggs as not parasiti-

pupation, adult successful emergency was zed, the error was 15.1% (X*=2.3; P>0.01)

about 94.3%. Sex ratio of adult flies emerging thus offsetting the first type of error. In agree-

was 0.47 Ú 3 to 0.53 2 2 (La Porta, 1987). ment with Todd £ Lewis (1976) it should be

added that the estimates should be based on a

reasonably large number of collections, over

large areas, to minimize the chance of over or

underestimation of actual percentage of para-

sitism.

The simple method of using presence of

parasitoid eggs on the host surface to estimate

percentage parasitism is demonstrated as va-

lid (Table 3).

TABLE 3

FREQUENCY OF RIGHT/WRONG DESIGNATION

OF NEZARA VIRIDULA BEARING

TRICHOPODA GIACOMELLIT EGGS A PARASITIZED

AND THOSE WITHOUT EGGS AS NOT PARASITIZED(a)

Designation Bugs with Bugs without To-

parasitoid eggs parasitoid eggs tales

Right 1 053 1 383 2 436

Wrong 157 244 401

1 210 1 627 2 837

Totals

% wrong designations 12.7% 15.1%

(a)X? was used top test any difference.

X?=2.3; (df=1).

La Porta: Parasitism by Trichopoda giacomelli on Nezara viridula 87

ACKNOWLEDGMENTS

The author thanks Dr. Graciela Valladares for

a critical review of the manuscript.

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NOTAS CIENTIFICAS

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 89-91

APORTE AL CONOCIMIENTO DE LOS BUPRÉSTIDOS DE CHILE

(COLEOPTERA: BUPRESTIDAE). QUINTA CONTRIBUCIÓN

Tomás MooRE!'

RESUMEN

El autor informa sobre la ocurrencia de Tyndaras (s.s.) planata (L. y G.) en Biobío, VIII Región, nueva

cita y la correcta referencia bibliográfica de Conognatha (Pithiscus) germaimi Thery. Rectifica nombre de

Conognatha (Pithiscus) chilensis interrupta Moore por estar previamente ocupado, designándola como C.

(Pithiscus) chilensis bellamyi Moore, nombre nuevo.

Se establece que Conognatha (Pithiscus) fisheri Hosch. es una subespecie de C. (Pithiscus) azarae (Phil. y

Phil...

ABSTRACT

The occurrence in Biobío, VIII Región, of Tyndaris (s.s.) planata (L. 8 G.), new record, and the correct

bibliographic reference for C. (Pithiscus) german: Thery are informed. The name of C. (Pithascus)

chilensis interrupta Moore was pre-occupied. It's changed to C. (Pathiscus) chilensis bellamy: Moore new

name.

C. (Pithiscus) fisheri Hosch. is stablished as a subspecies of C. (Pithiscus) azarae (Phil. € Phil.).

Tyndaris (s.s.) planata (L. y G.)

Esta es una de las especies más comunes, sien-

do recolectada habitualmente a todo lo ancho

de Chile, desde la precordillera andina hasta

el litoral, y latitudinalmente desde Coquimbo,

IV Región (30 lat. sur), hasta Maule, VII Re-

gión (367 lat. sur). Sin embargo, ha sido encon-

trada por primera vez en el Parque Nacional

Laguna del Laja: El Toro, Antuco, Biobío,

VIII Región (37,5 lat. sur). 16, 25/1/1987 so-

bre Rosa moschata Herrn. y Fabiana imbricata R.

et Pav. (Fig. 1).

Esto amplía considerablemente su área de

distribución a pesar de importantes lagunas o

zonas sin recolección entre Talca, VII Región,

y Chillán, VII Región.

Conognatha (Pithiscus) germammi Thery

A. Hoscheck (1934) establece que el nombre

tnifasciatus Germain € Kerremans, previamen-

te ocupado (trnifasciata F.), debe cambiarse por

¡Sociedad Chilena de Entomología. Casilla 21132,

Santiago-Chile.

(Recibido: 3 de enero de 1990. Aceptado: 25 de mayo

de 1990).

germamm según sugerencia dada por su colabo-

rador A. Thery. Sin embargo, este último no

publicó ninguna nota al respecto. En conse-

cuencia, la cita correcta para esta especie es la

C. (Pithiscus) germaini Thery, 1934. in A. Hos-

check, Monographie der Gattung Conognatha

Eschz., Mém. Soc. Ent. Belg., 24: 189.

Conognatha (Pithiscus) chilensis bellamyt

Moore nombre nuevo

Por error involuntario (Moore, 1986), designé

esta subespecie con el nombre de interrupta,

siendo que ya había sido ocupado por Water-

house (1882) para su Conognatha (s.s.) interrup-

ta de Colombia.

He decidido efectuar la presente correc-

ción, designándola como C. (Pithiscus) chilensis

bellamyi Moore, dedicada a mi gran amigo y

renombrado buprestólogo norteamericano

Dr. Charles L. Bellamy.

Conognatha (Pithiscus) azarae fisher

Hoscheck nuevo estatus

La posición de C. (Paithiscus) fisheri Hosch.

(1934) como subespecie de C. (Prthiscus) azarae

90 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

28__

30_— Coquimbo

“e

Territorio

chileno

e Anlártico s»

Figura 1. Distribución geográfica de Tyndaris (s.s.) planata

(UL. 7 (Co

(Phil. € Phil.) (1860), resulta de las leyes no-

menclaturales vigentes.

La relación entre estos dos taxa se establece

por semejanzas morfológicas, con diferencias

leves que no justifican su mantención como

entidades específicas.

C. fisheri Hosch. difiere de C. azarae (Phil. €

Figura 2. Subespecies de Conognatha azarae: A y B: Conog-

natha a. azarae (Phil. 8 Phil.). B y C: Conognatha a. fisher

Hoscheck A = silueta del adulto, B = edeago.

Phil.) por: su colorido verde brillante en todo

el cuerpo; frente levemente más ancha; tercer

antenito de similar largo que el segundo ante-

nito; manchas elitrales dispuestas general-

mente en dos bandas transversales, siendo la

Terilorio

chileno

. Anlartico Ss»

ue Su

Moore: Aporte al conocimiento de los Buprestidae de Chile 91

Coquimbo

anterior casi siempre fragmentada. Las geni-

talias macho y hembra son muy parecidas, no

presentando caracteres que indiquen una

marcada diferenciación con un padrón muy

distinto del resto del grupo chileno; especial-

mente singular es la zona anterior del pene

con su extremo agudo muy largo, de lados

cóncavos y ensanchado fuertemente hacia la

base (Fig. 2).

Estos dos taxa que viven en la precordillera

andina, no se superponen, si bien existen al-

gunos datos sin confirmar que la subespecie

azarae fisher Hosch. se ha recolectado en la

precordillera de Curicó, VII Región, sobre el

mismo huésped de los ejemplares topotípicos

(Kageneckia angustifolia D. Don), lo que la acer-

ca mucho geográficamente a la subespecie

azarae azarae (Phil. 8 Phil.) recolectada en Vil-

ches, Talca, VII Región, en la localidad más

septentrional de su área de distribución

(Fig. 3).

LITERATURA CITADA

HoschHeEckK, A. 1934. Monographie der Gattung Conognal-

ha Eschz. Mém. Soc. Ent. Belg., 24: 95-289 + ilustr.

MooRrE R., T. 1986. Descripción de una nueva subespecie

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Chile, 57: 197-199.

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chilensia praesertim valdiviana. Stett. Ent. Mio 2

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dae. Ann. Mag. Nat. Hist., 9(5): 50-52.

Figura 3. Distribución geográfica de las subespecies:

C. (Pithiscus) azarae azarae (Phil. y Phil.)

C. (Pithiscus) azarae fisher Hoscheck

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 93-94

SCYMNUS (P.) LOEWII! MULSANT, NUEVO COCCINÉLIDO

(COLEOPTERA: COCCINELIDAE) PARA CHILE

ALFONSO AGUILERA P.' y SerGIO Rojas P.?

RESUMEN

En febrero y marzo de 1989 en la localidad de La Cruz, provincia de Quillota, V Región, se colectó por

primera vez en Chile el coccinélido Scymnus (P.) loewia Mulsant. En el presente trabajo se da a conocer

este hallazgo con los principales caracteres morfológicos de la especie y los primeros antecedentes de su

hábito depredador sobre áfidos.

ABSTRACT

Scymnus (P.) loewa Mulsant it is a new coccinellid (Coleoptera) reported from Chile. It was collected in

La Cruz, locality near to Quillota, V Región, on February and March of 1989. Some aspect about it

morphology and predator feeding habit on aphids is mentioned in this work.

En febrero y marzo de 1989 uno de los autores

de esta nota (S. Rojas) colectó 27 ejemplares de

un coccinélido en la localidad de La Cruz,

provincia de Quillota, V Región de Chile.

Los primeros tres ejemplares se colectaron

sobre alfalfa en la Subestación Experimental

de Control Biológico y el resto se colectó con

red, en varias oportunidades, sobre diversas

malezas existentes en un sitio baldío, ubicado a

un costado del camino troncal que une las

localidades de La Cruz y La Calera.

En abril de 1989 parte del material (12

ejemplares) fue legado a otro de los autores

(A. Aguilera) para que determinara la especie.

Tres de los ejemplares se sometieron a proce-

so de desgrasamiento, clarificación y montaje

en portaobjetos para observar los caracteres

morfológicos que permitieran la identifica-

ción de los especímenes (Fig. 1).

En efecto, el estudio comparativo del seg-

mento terminal del palpo maxilar; el largo,

forma y número de segmentos de la antena; la

expansión del clípeo, el ancho de la base del

'INIA-E.E. Carillanca, Casila 58-D, Temuco-Chile.

“INIA-S.E.E. de Control Biológico La Cruz, Casilla 3,

La Cruz-Chile.

(Recibido: 19 de enero de 1990. Aceptado: 25 de mayo

de 1990).

pronoto comparado con el ancho de la base de

los élitros y la emarginación de ambos; ancho

de la epipleura y su carina interna; pubescen-

cia del dorso; forma y tamaño del escutelo;

ubicación, forma y separación de los ojos; ta-

0.5 mm

Figura 1. Scymnus (P.) loewna Mulsant. a. Adulto. b. Antena.

c. Línea postoxal. d. Falobase y traba. e. Sifo.

94 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

maño de las facetas. Número visible de los

segmentos abdominales, estructura de la línea

postcoxal. Genitalia del macho; forma y largo

de las parámeras respecto al lóbulo medio de

la falobase; pieza basal; largo, ancho y forma

de la traba, curvatura y largo del sifo; forma y

tamaño de la cápsula sifonal y ápice del sifo; y

basados en los trabajos de Sasaji (1968) y Gor-

don (1976; 1985), se concluyó que los ejempla-

res disectados y examinados corresponden a

la especie Scymnus (Pullus) loewa Mulsant, ubi-

cada sistemáticamente bajo la subfamilia

Scymninae; tribu Scymnin1.

Según Gordon (1987), el tipo de la especie

se encuentra depositado en la colección de

G.R. Crotch, conservada en el Museo de Zoo-

logía de la Universidad de Cambridge, Ingla-

terra.

Mulsant (1850) describió la especie de

ejemplares colectados en México por Reiche y

Westwood.

Korschefski (1931) la incluye en su catálogo

como una especie americana. Posteriormente,

Blackwelder (1945) la cita, además de México

y EE.UU., para Guatemala, Puerto Rico, Anti-

gua y Monserrat.

Gordon (1976; 1985) establece la sinonimia

de la especie y señala a México como localidad

tipo de la misma. Este autor manifiesta que en

EE.UU. está distribuida a través de Louisiana,

California, Arizona y Texas.

Otros autores como Crotch (1874), Philippi

(1887) o Bréthes (1921), que estudian material

chileno, no citan la especie para el país.

Trabajos realizados con introducciones de

insectos entomófagos o de control biológico

de plagas efectuadas en Chile (Caltagirone,

1957; González y Rojas, 1966; González,

1969; Zúñiga, 1985), no hacen referencia a S.

loewr.

De acuerdo a los antecedentes expuestos, se

concluye que la especie de coccinélido Scynmus

(Pullus) loewti Mulsant corresponde a un nue-

vo registro para Chile.

En mayo de 1989, en el mismo lugar indica-

do anteriormente, pasando red sobre las ma-

lezas galega, Galega officinalis, y falso té, Bidens

spp., se colectaron otros tres ejemplares, y en

La Cruz, sobre vides cultivadas en espaldera,

se colectaron más ejemplares de $. loewi. Con

este material, en la Subestación Experimental

de Control Biológico de La Cruz, bajo condi-

ciones de laboratorio, se ha intentado criar

esta especie para observar detalles de su onto-

genia y etología, consiguiéndose postura y la

verificación de su hábito afidófago al alimen-

tarse sobre el pulgón Myzus sp.

LITERATURA CITADA

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MuLsanr, E. 1850. Species des coléopteres triméres sécu-

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PhiLipp1, F.H. 1887. Catálogo de los coleópteros de Chile.

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Sasaj1, H. 1968. Phylogeny of the family Cocinellidae

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ZÚNIGa, E. 1985. Ochenta años de control biológico en

Chile. Revisión histórica y evaluación de los proyectos

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45(3): 175-183.

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 95

FEROMONA DE UNA ESPECIE DE CERAMBYCIDAE ATRAE A LOS MACHOS

DE OTRO GENERO (COLEOPTERA)

ErnesTO KRAHMER G.'

Durante el mes de noviembre de 1988 se cap-

- turaban machos de “sierra”, Callisphyris macro-

pus (Newman) con una hembra nacida en cau-

tiverio, colocada dentro de una jaula-trampa.

Se habían reunido ya varios machos de la

“sierra”, cuando repentinamente se posó tam-

bién un macho de Platynocera viridas (F. € G.)

sobre la jaula. Algunos días después sucedió lo

mismo en otro lugar, utilizando la misma

hembra; en esta oportunidad fueron 3 los ma-

chos de la Platynocera que llegaron a la jaula.

Dos días después se volvió a probar en el

primer lugar, donde habían abundantes ma-

tas de quila (Chusquea quala), planta en la cual

se desarrolla P. virescens. Corría fuerte viento

del sur y la temperatura era cercana a 22*C;

colocando la hembra de C. macropus siempre a

favor del viento en relación a las quilas, se

lograron reunir 43 machos de Platynocera y 5

de Callisphyris, en un lapso de tres horas.

Durante el mes de diciembre se probó de

nuevo con una nueva hembra de Callisphyras,

notándose que las Platynocera habían dismi-

nuido en su población, pues las condiciones

atmosféricas eran muy similares.

En el mes de noviembre de 1989 se repitió

la prueba en ambos lugares, reuniendo 35 y 14

Platynocera, en dos días consecutivos.

Platynocera wirescens aparece a fines de sep-

tiembre, en cambio Callisphyris macropus lo ha-

ce un mes más tarde. Generalmente emergen

primero los machos, apareciendo las hembras

a mediados de noviembre y la mayor parte en

diciembre. En esta última época del año que-

dan muy pocas Platynocera.

CAPTURAS DE P. V/RIDIS CON HEMBRAS DE C. MACROPUS,

X REGIÓN-CHILE (VALDIVIA)

1988 20 de noviembre

25 de noviembre

27 de noviembre

9 de diciembre

14 de diciembre

1989 11 de noviembre

12 de noviembre

¡Casilla 546, Valdivia-Chile.

l macho

3 machos

43 machos

4 machos

l macho

35 machos

14 machos

(Recibido: 8 de agosto de 1990. Aceptado: 30 de agosto de 1990.)

Santo Domingo

Fundo Huacho-Copihue

Santo Domingo

Fundo Huacho-Copihue

Santo Domingo

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 97-98

SELECCIÓN TRÓFICA DE DICTYNEIS ASPERATUS (BLANCHARD, 1851)

(COLEOPTERA: CHRYSOMELIDAE: EUMOLPINAE)

SOBRE PINUS RADIATA D. DON

VIVIANE JEREZ R.' y RENATO ARCE”

RESUMEN

Se informa el hallazgo de Dictyners asperatus (Blanchard, 1851), crisomélido nativo, actuando como

defoliador de Pinus radiata D. Don en la VIII Región de Chile y se entregan algunos datos sobre su

ontogenia.

ABSTRACT

The discovery of Dictyneis asperatus (Blanchard, 1851), native Chrysomelidae, were found as defoliator

of Pinus radiata D. Don on the VIII Region of Chile, is hereby informed and data of its ontogeny are

given.

La introducción masiva en Chile de Pinus ra-

diata D. Don ejerce una acción selectiva sobre

la entomofauna existente en la vegetación na-

tiva, permitiéndole expresar la potencialidad

de usar tróficamente este recurso vegetal (Sáiz

y Jerardino, 1985). En el caso de los insectos

fitófagos, la colonización y utilización de P.

radiata representa una opción que será utiliza-

da o no, según las características propias de

cada especie (Sáiz y Salazar, 1981).

En la V Región, prospecciones faunísticas

realizadas en plantaciones de P. radiata, han

permitido detectar la presencia y actividad de

algunas especies de coleópteros fitófagos, en

vías de establecerse en ellas.

Al respecto, Sáiz y Gomá (1985) destacan la

acción defoliadora de dos especies de Curcu-

lionidae, Cyphometopus marmoratus (Blanchard)

y Gemiocremnus chilensis (Boheman), que utili-

zan la acícula del pino como material trófico.

Por otra parte, Sáiz y Jerardino (1985) re-

gistraron en plantaciones de P. radiata de 10 a

40 años de edad, la presencia de dos especies

'Departamento de Zoología, Universidad de Concep-

ción. Casilla 2407. Concepción-Chile.

“Servicio Agrícola y Ganadero, Serrano 529. Concep-

ción-Chile.

(Recibido: 9 de octubre de 1990. Aceptado 16 de octu-

bre de 1990).

de crisomélidos, Kuschelina decorata (Blan-

chard) (Alticinae) y Mylassa sp. (Cryptocepha-

linae), pero no se había observado que en Chi-

le algún representante de esta familia utilizara

la acícula del pino como recurso alimenticio.

En 1989, como parte del Proyecto de Diag-

nóstico y Vigilancia Forestal del Servicio

Agrícola y Ganadero (SAG) de Concepción, se

realizaron prospecciones faunísticas en una

parcela ubicada en Quillón, provincia de Con-

cepción, VII Región. Esta parcela, reforesta-

da con pinos de 3 a 4 años de edad, presenta

algunos remanentes de vegetación esclerófila

en la que predomina Lithraea caustica en forma

arbustiva.

En este sector se observó que los pinos pre-

sentaban gran cantidad de acículas secas y da-

ñadas. Prospecciones en árboles control, per-

mitió detectar la presencia de adultos de Dicty-

news asperatus (Blanchard, 1851), crisomélido

endémico de Chile y que normalmente se en-

cuentra (Jerez en prensa) sobre Aristotelia chi-

lensis (maqui), Lomatia dentata (avellanito) y Lo-

matia hirsuta (radal). Son insectos con baja va-

gilidad, debido a que carecen de alas metato-

rácicas, por lo cual tienden a permanecer

siempre sobre la misma planta, protegidos en-

tre el follaje.

Con el fin de comprobar la actividad trófica

y biológica de D. asperatus sobre las acículas de

P. radiata, se recolectaron 13 individuos (9

98 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

hembras y 4 machos) y se mantuvieron en

cajas de crianza a temperatura constante de

23%C, fotoperíodo de 13 horas luz, 11 horas

obscuridad y acículas frescas, obtenidas de ár-

boles de edad semejante.

Se observó que los adultos de D. asperatus

utilizan las acículas de pino como alimento,

extrayendo parte de ella por medio de morde-

duras en la región basal, lo que tiene por efec-

to la flexión del sector apical de la acícula y su

posterior desecamiento.

El comportamiento de los insectos en estas

condiciones fue aparentemente normal; se

observaron cópulas y cuatro hembras ovipu-

sieron después de 7 días aproximadamente,

con 17 huevos en promedio para cada una.

Los huevos son de color amarillo-

anaranjado, corion liso y brillante y miden

aproximadamente 0,8 mm de longitud y 0,3

mm de ancho (n=52).

La eclosión de larvas se produjo 9 a 10 días

después de la oviposición y no se observó acti-

vidad trófica de ellas en las acículas.

Con respecto a los hábitos alimenticios de

los estadios larvales, Jolivet et al. (1988), indi-

can que las larvas de Eumolpinae son de hábi-

tos subterráneos, se alimentan de raíces y son

totalmente polífagas. Nuestras observaciones

indican que por lo menos el primer estadio

larval sobrevive bastante bien en humus, ali-

mentándose de materia orgánica, por lo cual

es probable que en la naturaleza ocurra un

proceso similar.

Jolivet et al. (1988) sostienen además que

todos los Eumolpinae, a partir de una oligofa-

gla básica, han sido capaces de adquirir polifa-

gla secundaria, adaptándose fácilmente a nue-

vos recursos. Así, entre las plantas hospedado-

ras de Eumolpinae se destacan a nivel mundial

cuatro familias de coníferas, por lo tanto es de

esperar que algunas especies de Eumolpinae

endémicos de Chile puedan derivar hacia este

nuevo sustrato alimenticio, produciendo un

daño en las plantaciones de P. radiata, el que

deberá evaluarse a futuro.

LITERATURA CITADA

BLANCHARD, E. 1851. Fauna Chilena. Insectos. Coleópte- |

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gía 5: 522-558. Imprenta de Maulde et Renou. Paris.

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JoLiver, P.; E. PETITPIERRE €e T.H. Hsiao. 1988. Food

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and evolutionary perspectives. In. Biology of Chryso-

melidae. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht.

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ciones de Pinus radiata sobre la entomofauna de bio-

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Nat. Valparaíso, 14: 155-173.

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Pinus radiata aspectos biológicos y evaluación del daño.

An. Mus. Hist. Nat. Valparaíso, 15: 59-70 (1982).

SÁrz, F. y M. JERARDINO. 1985. Efecto selectivo de las

plantaciones de Pinus radiata sobre la entomofauna de

biomas nativos. II. Dípteros y Coleópteros del follaje. |

Rev. Chilena Entomología, 12: 185-203.

COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS

ACARINA

PascHoaL, A.D. 1989. Description of a new genus-

Hammeriella ge.n-from South America and a new fami-

ly-Hammeriellidae fam. n. (Acari, Oribatei). Revista

Brasileira de Zoologia, 6(1): 17-24.

El autor crea el género Hammeriella, para ubicar en él a dos

especies descritas previamente en el género Pedrocortesia:

P. grandis Hammer y P. australis Hammer, la primera de

Perú y la segunda presente en el extremo sur de América

(Chile y Argentina). Para este nuevo género el autor pro-

pone una nueva familia, Hammeriellidae, sin efectuar

una discusión de las relaciones de la misma con los demás

taxa de Oribatel.

PascHoaL, A.D. 1989. Recharacterization of Gymnoda-

maeoidea and erection of Plateremaeoidea (Acari,

Oribatei), with key to families and genera. Revista

Brasileira de Zoologia, 6(2): 191-200.

El autor trata dos superfamilias de oribátidos, entregando

una clave para el reconocimiento de estas superfamilias,

familias y géneros. Géneros incluidos en la clave, con

representantes en nuestro país, son: Plateremaeus (1 espe-

cie, Plateremaeidae), Hammeriella (1 especie, Hammerie-

llidae) y Pheroliodes (1 especie, Pheroliodidae), de acuerdo

a Covarrubias, 1986 (Covarrubias B., R. 1986. Acta Ento-

mológica Chilena, /3: 167-175).

COLEOPTERA

RorG, J., S. y A.C. CICCHINO. 1989. Revisión del género

Barypus Dejean, 1828 (Coleoptera: Carabidae: Brosci-

ni). Parte 1. Boletín de la Sociedad de Biología de

Concepción, 60: 201-225.

En esta primera parte de la revisión del género Barypus,

los autores tratan 8 especies, de las cuales 4 son descritas

como nuevas; no se presenta clave para el reconocimiento

de las especies, sin embargo las descripciones se comple-

| mentan con 92 figuras de caracteres morfológicos exter-

nos e internos, además del aspecto general del adulto, de

cada especie tratada. Como presentes en Chile se citan a

Barypus clivinoides (Curtis), B. paralellus (Guérin), B. bon-

vouloiri (Chaudoir) y B. parnensis Roig y Cicchino.

DIPTERA

CARVALHO, C.J.B. de 1989. Revisáo das espécies e posicáo

sistemática de Palpibracus Rondani (Diptera, Musci-

dae). Revista Brasileira de Zoología, 6(2): 325-375.

| Se efectúa una revisión sistemática de las especies pertene-

cientes al género Palpibracus, presentes en el extremo sur

de América, entregándose una clave para el reconoci-

miento de ellas. Para las 16 especies tratadas, todas pre-

sentes en Chile (una de ellas nueva: P. albuquerque: Carval-

ho), se entrega una detallada descripción y su distribución

geográfica conocida. Se incluye en el género Palpibracus a

Rev. Chilena Ent.

1990, 18: 99-101

Phaoma peruvana Malloch (=Darwinomyia angolensis Ma-

lloch).

CARVALHO, C.J. 1989a. Revisáo dos generos sul-

americanos: Brachygasterina Macquart e Correntosia

Malloch (Diptera, Muscidae). Revista Brasileira de

Zoologia, 6(3): 473-484.

CARVALHO, C.J. 1989b. Revisáo de Psilochaeta Stein e des-

cricáo de Dalecyella gen. m. do Chile (Diptera, Musci-

dae). Revista Brasileira de Zoologia, 6(3): 485-506.

En el primero de estos aportes, el autor propone la sinoni-

mia de Euphaonia Malloch con Brachygasterina Macquart;

este último género queda integrado en consecuencia por 3

especies: B. fulvohumeralis (Malloch), B. violaceiventris Mac-

quart y B. major Malloch, todas ellas se encuentran presen-

tes en Chile, presentando además una clave para su reco-

nocimiento. El género es exclusivo a América del Sur.

En el segundo trabajo el autor trata las especies del

género sudamericano Psilochaeta Stein, integrado por 4

especies (todas presentes en Chile): P. chlorogastra (Wiede-

mann), P. pampeana (Shannon é: Del Ponte), P. chalybea

(Wiedemann) y P. vtolescens (Dodge); en el caso de P.

carnifex Stein (descrita de Chile) no es incluida en la clave,

debido a que no ha sido identificada después de su des-

cripción. Propone además el nuevo género Dalcyella para

ubicar la especie chilena Helina veniseta Dodge.

CoELHo, S.M.P.; C.J.B. DE CARVALHO y J.H. GUIMARAES.

1989. Chave e sinonímias para as espécies sul-

americanas de Winthemia Robineau-Desvoidy (Dipte-

ra, Tachinidae) com descricáo de trés espécies novas.

Revista Brasileira de Zoologia, 6(2): 271-296.

Los autores entregan una clave para reconocer las espe-

cies de Winthemia presentes en América del Sur, de las

cuales dos se encuentran en Chile: W. trinitatis Thompson

y W. ignobilis (Wulp) (=W. reliqua Cortés £e Campos);

estableciendo nuevas sinonimias.

PapE, T. 1989a. A review of American Oebalía Robineau-

Desvoidy with the first Neotropical record (Diptera:

Sarcophagidae). Entomologica Scandinavica, 19: 349-

304.

PapPE, T. 1989b. Revision of Opsidia Coquillet (Diptera:

Sarcophagidae). Entomologica Scandinavica, 20: 229-

241.

En el primer aporte el autor describe Oebalía auraria,

nueva especie para Chile, la cual corresponde al primer

registro del género para la región Neotropical. Los ante-

cedentes biológicos conocidos indican que los represen-

tantes de este género son cleptoparásitos de Sphecidae

(Hymenoptera).

En el segundo aporte se redefine Opsidia Coquillet, se

proponen nuevas sinonimias y se describen 3 nuevas espe-

cies; entre ellas, describe a O. oebalwides para Chile y

Argentina. Una de las especies de este género se registra

como parásito de Bembix (Hymenoptera: Sphecidae); para

las especies presentes en Chile, O. ¿intonsa Aldrich y O.

oebalioides Pape, no existen antecedentes biológicos.

100 Rev. Chilena Ent. 18, 1990

PapPE, T. 1990. Revisionary notes on American Sarcopha-

ginae (Diptera: Sarcophagidae). Tijschrift voor Ento-

mologie, 13(1): 43-74.

Se redefinen un conjunto de géneros de Sarcophaginae.

En lo que respecta a Chile, los 5 géneros considerados

previamente en la tribu Microcerellini, quedan reducidos

por las sinonimias propuestas por el autor, a uno: Microce-

rella Macquart (=Aulacophyto Townsend, Alaccoprosopa

Townsend, Austrohartigia Townsend, Itiophyto hall), con 9

especies.

HYMENOPTERA

RoIG ALsixa, A. 1989. La posición sistemática de los gru-

pos hasta ahora incluidos en Chirodamus Haliday sensu

lato y revisión de Pompilocalus gen. nov. (Hymenopte-

ra, Pompilidae). Revista de la Sociedad Entomológica

Argentina, 47(1-4): 3-73.

Se crea el género Pompilocalus, de distribución restringida

a América del Sur, para incluir un conjunto de 8 especies

previamente consideradas en Chirodamus, además de 20

nuevas especies. Pompilocalus Roig se encuentra represen-

tado en Chile por: P. hairticeps (Guérin), P. catriel Roig, P.

lautaro Roig y P. caupolican Ro1g. Se presentan claves, para

machos y hembras, para el reconocimiento de los grupos

incluidos con anterioridad en Chirodamus y para la separa-

ción de especies de Pompilocalus. Las descripciones se com-

plementan con 78 figuras de las especies tratadas; se pro-

ponen además nuevas sinonimias.

Ro1G ALsIxa, A. 1989. The tribe Osirini, its scope, classifi-

cation, and revisions of the genera Parepeolus and Osir-

nus (Hymenoptera, Apoidea, Anthophoridae). The

University of Kansas Science Bulletin, 54(1): 1-23.

Para Chile, se describe el nuevo género Ecclitodes, ubican-

do en él a la especie Epeolus stuardi Ruiz.

Van ACHTERBERG G. 1988. Revision of the subfamily Bla-

cinae Foerster (Hymenoptera: Braconidae). Zoologis-

che Verhandelingen, 249: 1-324.

Se entregan claves para géneros y especies. Se efectúa un

análisis cladístico de las relaciones entre taxa (supraespecí-

ficos) de esta subfamilia, presentándose un cladograma.

Para Chile se describen dos géneros: Chalarope y Grypoke-

ros y las siguientes especies: Chalarope petiolatus, Grypokeros

curticaudis, G. fuscifemur y Mesoxiphium tenuicornis; para

todas las especies se entregan figuras del aspecto general

del adulto, alas y diversos detalles morfológicos. Blacinae

queda representada en nuestro país por 6 géneros y 8

especies.

LEPIDOPTERA

Davis, D.R. 1989. Generic revision of the Opostegidae,

with a synoptic catalog of the World's species (Lepidopte-

ra: Nepticuloidea). Smithsonian Contributions to Zoolo-

gy, 178: 1-11, 1-97.

Se describe para Chile a Notropostega y N. atrata; se trata de

un género monoespecífico y constituye el primer registro

de la familia Opostegidae para nuestro país. N. atrata

Davis es una especie que en su estado larval es minadora

del cambium en coigúe (Nothofagus dombeyi).

GeEnNTILI, P. 1989. Revisión sistemática de los Cossidae |

(Lep.) de la Patagonia andina. Revista de la Sociedad

Entomológica Argentina, 45(1-4): 3-75 (1986).

Se reconoce la presencia de 8 géneros y 15 especies de

Cossidae, fundamentalmente de la zona de bosque andino

patagónico y área de transición circundante. De los ocho

géneros, tres son descritos como nuevos (Andesiana, Aus-

trocassus y Schausisca); del total de especies tratadas, 7 se

describen como nuevas. Se revalida el género Philanglaus

Butler y se proponen nuevas sinonimias y una nueva

combinación.

Como presentes en Chile se cita a Chilecomadia Dyar £c

Schaus (3 especies), Andesiana Gentili (1 especie), Austro-

cossus Gentili (1 especie), Surcossus Heimlich (1 especie),

Phailanglaus Butler (2 especies), Gruira Walker (2 especies)

y Breyeriana Orfila (1 especie). Se presenta una clave para

el reconocimiento de géneros y especies; complementan

las descripciones 108 figuras. Este aporte es complemen- |

tario con un trabajo previo de la autora (Gentili, P. 1988. |

Análisis de la distribución geográfica de Cossidae (Lepi-

doptera: Ditrysia) de la Patagonia andina. Revista Chilena |

de Historia Natural, 6/: 191-198).

PovoLnf, D. 19892. Gnorimoschemini of southern South y

America IV: The genera Symmetrischema and Phthon- |

maea (Lepidoptera, Gelechiidae). Steenstrupia, 15(3):

57-104.

PovoLnY, D. 1989b. Gnorimoschemini of southern South

America V: Corrections and additions to parts 1-11I

(Insecta, Lepidoptera, Gelechiidae). Steenstrupia,

15(5): 137-160.

En el primero de estos trabajos se describe para Chile una

nueva especie: Symmetrischema nanum Povolny; se encuen-

tran además citadas para nuestro país S. plaesiosema (Tur- |

ner) y S. striatella. El autor efectúa comentarios acerca de |

las relaciones entre las 4 especies que componen el género |

Phthorimaea (P. perfidiosa Meryck, P. operculella (Zeller), P.

euchthonta Meyrick y P. pherometopa Povolny).

En el segundo aporte se describen dos nuevas especies |

para Chile: Scrobipalpomina pseudogrisescens Povolny y S. |

obscuroiwdes Povolny. Ambos trabajos no incluyen claves.

Ruiz, V.H. 1989. Revisión sistemática de la familia Arctii-

dae en Chile (Lepidoptera). Gayana, Zoología, 53(4): |

117-181.

El autor describe tres nuevos géneros y cuatro especies; |

presenta claves para géneros y especies. Se entregan nue- |

vas combinaciones y diversos antecedentes biológicos de ||

las especies (estados inmaduros, distribución geográfica,

época de vuelo, plantas hospederas, etc.).

MECOPTERA

ByERs, G.W 1989. The Nannochoristidae of South Ameri-

ca (Mecoptera). The University of Kansas Science Bu-

lletin, 54(2): 25-34.

Se describe para Chile (presente también en Argentina) a

Nannochorista andina, presentándose una clave para el re-

conocimiento de las especies de Nannochorista; este género

queda representado en Chile por 3 especies: N. andina

'Byers, N. edwards: Kimmins y N. neotropica Navás.

WiLLMANN, R. 1989. Evolution und Phylogenetisches Sys-

tem der Mecoptera (Insecta: Holometabola). Abhan-

dlungen der Senckenbergischen Naturforschenden

Gesellschaft, 544: 1-153.

A base de un cuidadoso análisis de la morfología de alas,

¡genitalia y de los segmentos genitales, se muestra que

anteriores presunciones en relación a la evolución y rela-

ciones filogenéticas entre los Mecoptera, basadas mayorl-

tariamente en fósiles, no pueden ser verdaderas. Se pre-

senta un sistema filogenético para Mecoptera, en el cual se

ubican los representantes chilenos de la siguiente forma:

1. Nannomecoptera. 1.1 Nannochoristidae (Vannochoris-

ta: 3 especies en Chile).

2. Pistillifera, 2.1 Raptipedia, 2.1.1 Bittacidae (Anabrt-

tacus indipennis Kimmins y Thyridates chilensis (Klug)).

2.2 Opisthogonopora, 2.2.3 Panorpomorpha, 2.2.3.1

Eomeropidae (Notiothauma reedi Mac Lachlan, única

especie viviente).

ORTHOPTERA

CIGLIANO, M.M. 1989. Revisión sistemática de la familia

Tristiridae (Orthoptera, Acridoidea). Boletín de la So-

ciedad de Biología de Concepción, 60: 51-110.

La autora efectúa una revisión de los representantes de la

familia Tristiridae, ápteros en su gran mayoría (excepto

Elasmoderus y Enodisomacris), los cuales son endémicos de

América del Sur y con distribución andino-patagónica

(10% a 537 lat. S.). En lo que se refiere a Chile, describe el

nuevo género Enodisomacris (monobásico) y 3 nuevas espe-

cies: Enodisomacris curtipennis, Moluchacris nigripes y M.

laevigata.

La familia en Chile se encuentra representada por 11

de los 18 géneros que la integran, 8 de ellos monotípicos:

Atacamacris Carbonell y Mesa, Tristira Brunner, Peplacris

Rehn, Tropidostethus Philippi, Elysiacris Rehn, Eremopachys

Brancsik, Enodisomacris Cigliano y Uretacris Liebermann,

además de Bufonacris Walker (1 especie), Moluchacris

Comentarios Bibliográficos 101

Rehn (4 especies) y Elasmoderus Saussure (3 especies); en

total más del 65% de las especies conocidas se encuentran

en Chile. Se entregan nuevas sinonimias y combinaciones;

complementan las descripciones 237 figuras, incluyendo

la figura del adulto para todas las especies.

RONDEROS, R.A. y S. TurK. 1989. Notas sobre Melanopli-

nae neotropicales (Orthoptera: Acridiidae). Revista de

la Sociedad Entomológica Argentina, 46(1-4); 69-74.

Los autores describen una nueva especie, la cual es áptera,

para Chile: Nahuelía anthracina; el material proviene de la

XI Región (Aysén). Se entregan figuras que ayudan a su

reconocimiento.

PSOCOPTERA

BADONNEL 8: C. LienHARD. 1988. Révision de la famille

des Mesopsocidae (Insecta, Psocoptera). Bulletin du

Múseum national d'Histoire naturelle, Paris, 4* série,

10: 375-412.

Los autores proponen el nuevo género Newpsocus, para

ubicar en él a la única especie conocida para Chile de esta

familia: Mesopsocus termitiformiss New € Thornton, 1981.

SMITHERs, C.N. 1990. Keys to the families and genera of

Psocoptera (Arthropoda: Insecta). Technical Reports

of the Australian Museum, N? 2, 82 pp., 475 figs.

En páginas 3 a 8 entrega un listado de familias, subfami-

lias, tribus y géneros incluidos. Presenta a continuación

una clave para familias y luego claves para los géneros

integrantes de cada familia; las claves se complementan

con un conjunto de 475 figuras.

TRICHOPTERA

FLixr, O.S., jr. 1989. Studies on Neotropical caddisflies,

XXXIX: The genus Smicridea in the Chilean subregion

(Trichoptera: Hydropsychidae). Smithsonian Contri-

butions to Zoology, 472: i-1v, 1-45.

Se citan para Chile a 15 especies del género Smicridea Mac

Lachlan, de las cuales 11 se describen como nuevas; se

entregan claves para reconocimiento de las especies, se-

gún sexo. Las descripciones se complementan con 146

figuras.

M. ELGUETA

NOTICIAS

XII INTERNATIONAL PLANT PROTECTION CON-

GRESS. Congress theme: “Integrated management

for crop protection”. Rio de Janeiro - Brazil, 11-16

August 1991.

The XII International Plant Protection Congress will be

held at the Convention Center of the Hotel Nacional Rio -

Av. Niemeyer, 769 - Sáo Conrado, Rio de Janeiro, Brazil,

from August 11 to 16, 1991. English is the official langua-

ge of the Congress. Simultaneous translation to and from

Portuguese will be provided.

Activities planned include:

— Plenary lectures about relevant and updated subjects

by scientist of international reputation;

— Symposia about various subjects, sub-divided in va-

rious topics related to central theme of congress;

— Oral and poster sessions.

Abstracts for Oral and Poster Sessions will be conside-

red for subjects such as: Biological Control, Chemical

Control, Integrated Pest, Disease and Weed Managment,

Seed Health and Quarantine, Storage Protection, Host-

Plant Resistance, etc.

Suggested topics for Plenary Lectures include: Crop

losses caused by diseases, insects and weeds in the world,

Advances and future trends of biological control for plant

protection, between others.

Symposia suggested topics such as: Impact of pestici-

des in the environment, Host-plant resistance to pests,

Management of post-harvest pests and diseases, Ecologi-

cal basis for pest management, Development and use of

microbial pesticides, Cultural practices in IMP and Fores-

try integrated pest control programs.

For registration, abstracts, accomodations, booking

for social events, and information, write to: Secretariat of

the XII International Plant Protection Congress, Alcanta-

ra Machado Feiras e Promocoes Ltda., A/C R. Hamam

Eventos Especiais s/c Ltda., Rua Gabriel dos Santos, 88 -

01231 - Sáo Paulo - SP, BRAZIL.

II REUNIÓN ARGENTINA DE LIMNOLOGÍA. La Pla-

ta - República Argentina, 4 - 8 de noviembre de 1991.

Organizada por la Asociación Argentina de Limnología,

esta 1] Reunión Argentina de Limnología considera la

realización de paneles tales como Paleolimnología, Am-

bientes lacustres, Sistemas fluviomarítimos, Sistemas flu-

viales, y Biogeografía y Política ambiental, además de

Comunicaciones libres (orales y poster) y Conferencias y

Cursillos. El monto de la inscripción de participantes ibe-

roamericanos, que no son miembros de la Asociación, es

de US$ 30.00; otros extranjeros, US$ 50.00.

Toda correspondencia deberá dirigirse a: Presidente

de la Comisión Organizadora de la RAL'91, Instituto de

Limnología “Dr. Raúl Ringuelet” - UNLP, Casilla de Co-

rreo 712 - 1900 La Plata, República Argentina.

VII INTERNATIONAL EPHEMEROPTERA CONFE-

RENCE. Orono, Maine - USA, August 1992.

The 7th International Ephemeroptera Conference will be

held 3-6 August in Orono, Maine. Cassie Gibbs is the

conference convenor. If you have an idea for a special

session at this meeting or would like your name on the

mailing list for future conference announcements, write

to her at: Cassie Gibbs, Department of Entomology, Uni-

versity Of Maine, Orono, Maine 04469 USA.

CONTENIDO

AGUILERA P., A. y S. Rojas P. Scymnus (P.) loewa Mulsant, nuevo coccinélido (Coleopte-

Cocenellidae) para Chilestoticiinia IL AAA

A Cas RE REBOLEEDO Real EA

ANGULO, A.O. Paraeuxoa Forbes, 1933, versus Caphornia Koehler, 1958 (Lepidoptera:

Noctuidae): sinonimia de dos géneros andino-patagÓnicOS ...0oooocccccooocc..

ARTE, VERE AN o a

AskevoLD, I.S. 8 L. LeSaGE. A taxonomic revision of the genus Jansonius Baly 1878:

Taxonomic confusion and tribal reclassification (Coleoptera: Chrysomelidae: Eu-

ANTLEÍDLO) Loco 0 od A O O ooo o

BarriGA T., J.E. Parásitos y depredadores de larvas de Cerambycidae y Buprestidae

¡Caleopiera) de IMA O A o

Pe A caserio Pichu y JESDARRIGA . oo e AD

BeLLamy, C.L. £« T. MooreE. A review of the tribe Mendizabalini Cobos with the

alimento new taxa (Coleoptera: BUprestidac) .... mo... e

CALDERÓN, R.; M. GarripO y C. Pinto. Etapas del crecimiento de Acanthogonatus

ea O SO (Arancac: Nemestidac) ota e

CARRILLO Lt., R.; N. Munpaca B. y E. CISTERNAS A. Ametastegia glabrata (Fallen) especie

fitófaga introducida a Chile (Hymenoptera: Tenthredinida€e) ........o.o.......

Ch1arpA T., E.; M. Rojas G.L. y H. Toro G. Clave para los géneros de abejas de Chile

(Armenia O O doo:

IMA case Ro MCARRILLO LL ebala aii Sa

FicHer, T. y E. BarriGa. Observaciones biológicas sobre Holopterus annulicorms F.

Aiipls o NColeoptera:¡Cerambyadas oi e

CAPBTIDO, Me VERS INN A

Culez Su 1 WES AO A O o

CARRER ES VIE véase Ro REBOEEEDO) Ra eb dl. cuicos ta

Jerez R., V. y R. Arce. Selección trófica de Dictyneis asperatus (Blauchard, 1851)

(Coleoptera: Chrysomelidae: Eumolpinoe) sobre Pinus radiata D. Don ..........

KinGsoLvER, J.M. Checklist of Chilean Bruchidae with new synonymies and new

AS ao

KRAHMER G., E. Feromona de una especie de Cerambycidae atrae a los machos de otro

avaro (CA a ASIN oalulalo plo ae ale

La Porra, N.C. Evaluation of field parasitism by Trichopoda giacomella (Blanch.) Guima-

ráes, 1971 (Diptera: Tachinidae) on Nezara viridula (L.) 1758 (Hemiptera:

RENTA A O AS e ada a oa A

PESACEAIycase 19. ASKEVOLD 8 1. ILESAGE: 0000 a a RE

MarTrÍNEz, A. y L.E. Peña G. Oogenius castalloi sp. nov. (Coleoptera: Scarabaeidae)

Moore mi vease. DELEAMY Sel MOORE... 0.2 a a oe

Moore, T. Aporte al conocimiento de los bupréstidos de Chile (Coleoptera: Bupresti-

das). DC On a aia lb Sole Se eaaioio ia a.

MiiDacaD NA yease RACARRIILO Ml ea

ESCOTE veaser Ac MARDINEZ y IE RENA. o e

PINTO NCA Ea E RACADD ER ONE sa e IO

Prapo C., E. Presencia en Chile de Corythucha ciliata (Say) (Hemiptera: Heteroptera:

A OR