REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGIA

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Fundada en Santiago el 4 de Junio de 1922,

con el nombre de Sociedad Entomológica de Chile

Consolidada y reorganizada con el nombre de

Sociedad Chilena de Entomología el 30 de Marzo de 1935

Toda correspondencia y colaboraciones deben ser dirigidas a:

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ISSN 0034 - 740X

MCZ

LIBRARY

VOL. 19 (1991) JUN 0.8 1993 Conspice naturam,

Inspice structuram!

HARVARD

UNIVERSITY

I¡NENSTES LA 0d LLENA

D E

ENTOMOLOGÍA

La publicación del presente volumen

ha sido posible gracias al generoso legado efectuado a nuestra Sociedad,

por el Dr. CHaRLES P. ALEXANDER

SUMARIO

Asís, J.D.; S.F. Gayubo y J. Tormos. Comportamiento nidificador de dos especies de

Cerceris y descripción de la larva madura de C. bicincta (Hymenoptera: Sphecidae)

AskevoLD, 1.S. On some poorly known, missidentified and mislabelled Chilean

Chiysomelida (Coco

ARTIGAS, J.N. £e N. PaPAVERO. The American genera of Asilidae (Diptera): keys for

identification with an atlas of female spermathecae and other morphological

details. VII. 5. Subfamily Stenopogoninae Hull - Tribe Tillobromini, with des-

criptions of three new genera and two new species, and a catalogue of the

Ncotropicalispecies a a tl a

Irrnza R., J.H.; A. Lucero y M.A. MoraLeEs. Hermetismo en sociedades de Campono-

tus morosus Smith, 1858 (Hymenoptera: Formicidae) en nidos artificiales .....

CAMOUSSEIGHT, A. e I. BusramaANTE. Descripción de los huevos de los fásmidos

(Brasmatodeaikseudophasmatidao) de Cil

Chrarpa, E. y M. Rojas. Observaciones en la nidificación de Pachodynerus peruensis

(Satissure) (Ely menoptera Vespidae: Uca

NuUMHAUSER T., J. Observaciones sobre el género Pycnosiphorus: grupo fasciatus

(ColeopteraribUcanidas) nui AN

Sárz, F. Fecas de herbívoros introducidos en Chile semiárido como hábitat para el

desarollo de nsectos ol

BarriGa, J.E. y T. Fichet. Observaciones biológicas sobre Callisphyris molorchoides

(Guérin-Méneville, 1838) (Coleoptera: Cerambycidae) ......oooooomom..o.ooo..

BurckHarDr, D. € D. Acosri. New records of South American Peloridiidae (Ho-

mopter: Colconhynci a a EE

NoTA CIENTÍFICA

BARRIGA, J.E. y T. FicHeT. Anotaciones sobre la biología de Platynocera virescens (F. et

G.) (Coleoptera: Cerambycidae)

0000000000000000000000060%9000000:0000000000

REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGÍA ISSN 0034 - 740X

Publicación oficial de la Sociedad Chilena de Entomología,

Casilla 21132, Santiago (21) - Chile

debe citarse: Rev. Chilena Ent.

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Impreso en los talleres de

EDITORIAL UNIVERSITARIA

San Francisco 454 - Santiago

en el mes de diciembre de 1991

Rev. Chilena Ent.

1991, 19: 5-10

COMPORTAMIENTO NIDIFICADOR DE DOS ESPECIES DE CERCERIS

Y DESCRIPCION DE LA LARVA MADURA DE C. BICINCTA

HYMENOPTERA: SPHECIDAE)

Joser D. Asis**, SeverIANo F. Gayubo” y José Tormos?

SUMMARY

The nesting behaviour of C. bicincta was studied at Brácana (Granada, Southern Spain). The females

construct multicellular nests that they provision with chrysomelids. Maggots of the miltogrammine fly

Pterella melanura were obtained in more than 30% of the cells, while some cuckoo wasps and velvet ants

may also attack this species in the study area. Data are also offered on the biology of C. sabulosa, whose

females capture Hymenoptera. A description is also given of the mature larva of C. bicincta, whose

morphology is similar to that of other species of the genus previously studied.

RESUMEN

Se presentan datos sobre el comportamiento nidificador de C. bicincta, obtenidos a partir de un estudio

realizado en la localidad de Brácana (Granada, sur de España). Las hembras construyen nidos

multicelulares que aprovisionan con coleópteros crisomélidos. Se obtuvieron larvas del miltogramino

Pterella melanura en más de un 30% de las celdas, mientras que algunos crisídidos y mutílidos también

podrían atacar a esta especie en el área de estudio. Adicionalmente, se aportan algunos datos sobre la

biología de C. sabulosa, cuyas hembras capturan himenópteros. Se describe, además, la larva madura de

C. bicincta, cuya morfología es semejante a la de las otras especies del género estudiadas hasta el

momento.

INTRODUCCIÓN

Cerceris Latreille, 1802 es el género de la fami-

lia Sphecidae más ampliamente distribuido,

encontrándose en todas las regiones zoogeo-

gráficas. Es bastante uniforme en lo relativo a

su comportamiento nidificador (Alcock, 1974;

Evans, 1971; Evans y Rubink, 1978). Algunas

de las pautas comunes a las especies del géne-

ro (Evans, 1971) son, entre otras: los nidos con

"Department de Biologia Animal, Biologia Celular i

Parasitología, Facultat de Ciéncies Biológiques, Universi-

tat de Valéncia, Dr. Moliner, 50. 46100 Burjassot (Valén-

cia), España.

“Dirección actual: Departamento de Biología Animal,

Ecología, Parasitología, Edafología y Química Agrícola,

Facultad de Biología, Universidad de Salamanca, 37071

Salamanca, España.

“Departamento de Biología Animal, Ecología, Parasi-

tología, Edafología y Química Agrícola, Facultad de Bio-

logía, Universidad de Salamanca, 37071 Salamanca, Es-

paña.

(Recibido: 25 de octubre de 1990. Aceptado: 14 de

diciembre de 1990.)

un primer tramo vertical; el hecho de que

permanezcan abiertos durante el aprovisiona-

miento, rodeados por un anillo de arena; el

transporte mandibular de las presas; el alma-

cenamiento de las presas en la galería, antes de

ser transferidas a la celda y el mantenimiento

de un solo nido que se agranda progresiva-

mente durante la totalidad del período de acti-

vidad. No obstante esta uniformidad, las pre-

sas capturadas por las especies del género son

bastante diversas destacándose la especificidad

mostrada en la elección de las mismas por los

miembros de cada especie (Evans y Rubink,

1978; Gess, 1980).

A pesar de que han sido numerosos los

trabajos dedicados al estudio de la biología de

las especies de este género, el elevado número

de ellas —más de 850 según Bohart y Menke

(1976)— hace que todavía existan muchas de

las que no se conoce prácticamente nada sobre

su biología. En el presente trabajo se aportan

datos sobre el comportamiento nidificador de

Cerceris bicincta Klug, 1835, de la que sola-

mente se conocían algunas observaciones rea-

6 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

lizadas por Tsuneki (1965), describiéndose

también su larva madura que era desconoci-

da; se dan a conocer además, otros datos rela-

tivos a Cerceris sabulosa (Panzer, 1799).

C. bicincta es una especie que se distribuye

por el sur de Europa y norte de África, llegan-

do hasta Afganistán y Mongolia (Bohart y

Menke, 1976), mientras que C. sabulosa es una

especie propia de la Región Paleártica y de la

que se conocen bastantes datos relativos a su

biología, tales como el tipo de presas que cap-

turan, la estructura de sus nidos y algunos de

sus parásitos (Ferton, 1905 y 1910; Grandi,

1929)

MATERIALES Y MÉTODOS

Las observaciones se llevaron a cabo en la lo-

calidad de Brácana (Granada, UTM 3058 VG

1618, 510 m altitud), en una zona cercana al

río Genil, durante los días 12-16 junio de

1989. Se excavaron para su estudio cuatro

nidos de C. bicincta y dos de C. sabulosa.

RESULTADOS

Cerceris bicincta Klug

Descripción del área de nidificación

La agrupación estudiada se localizaba en un

camino horizontal poco transitado, con suelo

arenoso-arcilloso muy compacto, difícilmente

excavable y desprovisto de vegetación.

La mayor parte de los nidos — alrededor de

20— se encontraban agrupados en un área de

aproximadamente 3 X 3 m, aunque, también,

se observaron algunas hembras que habían

establecido sus nidos separados de esta agru-

pación.

Comportamiento de las hembras y

descripción del nido

La actividad de las hembras comienza hacia las

0900. Después de abrir la entrada del nido, en

el cual pasan la noche, permanecen varios mi-

nutos inmóviles, con la cabeza obstruyendo la

boca del mismo. Si observan cualquier movi-

miento extraño en el exterior se introducen

rápidamente hacia adentro, volviendo a sacar

la cabeza al poco tiempo. Es frecuente oír un

sonido característico, producido con las alas,

poco antes de que saquen la cabeza en la entra-

da. Después de pasar varios minutos obser-

vando las inmediaciones del nido, sacan poco

a poco el cuerpo y a continuación, súbitamen-

te, salen al exterior, sobrevolando el nido du-

rante varios segundos. Pautas similares han

sido descritas en varias especies del género

(Alcock, 1974; Byers, 1978; Elliott et al., 1981).

Las presas son transportadas en vuelo, con

el vientre hacia arriba y cogidas por las ante-

nas con las mandíbulas de la avispa; las patas 1

y II también intervienen en la sujeción de la

presa durante el transporte.

Al llegar al nido, la hembra se introduce

directamente en el mismo, desplazando la

presa ligeramente hacia atrás y arrastrándola

tras ella al interior. Las hembras depositan las

presas capturadas en la galería principal,

transfiriéndolas posteriormente a la celda.

Los nidos permanecen abiertos durante el

aprovisionamiento, rodeados por un anillo de

arena de 5-10 mm de altura y 30 mm de diá-

metro (diámetro del nido 5 mm), procedente

de la excavación de la galería. Cuando las

hembras se encuentran en el interior realizan-

do tareas de excavación de nuevas celdas, ta-

pan la entrada del nido.

El nido (Fig. 1) se inicia con un tramo prác-

ticamente vertical de 5-9 cm (x = 6,6, n = 4),

pasando luego a tener una pendiente mucho

más suave (5-15%). Las celdas se encuentran a

uno y otro lado de la galería principal, separa-

das de ésta por cortas galerías secundarias de

1,5-5 cm (x = 3) y a una profundidad de 8-15

cm (x 11,2; n= 13).

Las celdas contienen un número variable

de presas, entre 5-16'(x ="8,9 1 =10)] Las

presas capturadas por las hembras en el área

de estudio son coleópteros crisomélidos, per-

tenecientes a las siguientes especies:

Clytrinae

Clytra atraphaxidis (Pallas): 19.

Coptocephala floralis (Olivier): 158 8,159 2.

Tituboea biguttata (Olivier): 6 88, 12.

Cryptocephalinae

Cryptocephalus crassus Olivier: 18.

Cryptocephalus pominorum Burlini: 48d.

Cryptocephalus sexmaculatus Olivier: 4 dd,

Lisa

Asís et al.: Nidificación de dos especies de Cerceris 7

Figura 1: Nido de C. bicincta en sección.

Enemigos naturales

En el área de nidificación aparecen numero-

sas hembras de Pterella melanura (Meigen,

1824) (Diptera: Sarcophagidae) que permane-

cen sobre pequeñas piedras y persiguen a las

hembras de C. bicincta que transportan presas

al nido; en algunas ocasiones se observaron

hasta tres de estos dípteros siguiendo a una

hembra a pocos centímetros de distancia. Al

llegar la hembra al nido e introducirse en el

mismo, tratan de larvipositar sobre la presa

transportada.

Cuando las hembras advierten que son per-

seguidas por un díptero, no se dirigen directa-

mente al nido, sino que siguen volando, por lo

general, más cerca del suelo, efectuando giros,

e incluso volviéndose hacia sus perseguidores

y manteniéndose frente a ellos en vuelo está-

tICO.

Del total de las 26 celdas estudiadas en los

nidos excavados en el área de estudio, ocho de

ellas contenían larvas del miltogramino Ptere-

lla melanura.

Además de los miltograminos, también, se

observaron hembras de Sigilla dorsata (Fabri-

cius, 1798) y Smicromyrme partita (Klug, 1835)

(Hymenoptera: Mutillidae), así como de Chr)-

sis bidentata prommnea Linsenmaier, 1959 y He-

dychrum longicolle Abeille, 1877 (Hymenopte-

ra: Chrysididae) introduciéndose en los nidos

de Cerceris bicincta.

Cerceris sabulosa (Panzer)

Se descubrieron varios nidos de esta especie

en la misma área de nidificación de C. bicincta,

aunque en menor número.

En un nido sólo se pudo encontrar cuatro

presas en la galería, mezcladas con partículas

de arena —como es habitual en otras especies

del género— (Evans, 1971; Kurczewski y Mi-

ller, 1984). La galería era vertical, y las presas

se encontraban a una profundidad de 19 cm,

no pudiéndose hallar ninguna celda. En un

área cercana —de terreno bastante más suelto

y fácil de excavar—, se descubrió otro nido

que presentaba dos celdas, una sobre la otra, al

final de una galería vertical de 10 cm. En la

superior se encontraron nueve presas y el

huevo del himenóptero, mientras que la infe-

rior sólo contenía cuatro presas. Las presas

extraídas de los nidos fueron las siguientes:

Halictidae

Halictus (Halictus) maculatus Smith, 1848:

ue,

Lasioglossum (Evylaeus) planulum (Pérez,

1903): 19.

Lasioglossum (Evylaeus) pseudoplanulum

(Blúthgen, 1924): 283.

Lasioglossum (Evylaeus) sphecodimorphum

(Vachal, 1892): 109 2.

Lasioglossum (Evylaeus) aff. truncaticolle (Mo-

rawitz, 1872): 19.

Lasioglossum sp.: 1 $.

Lasioglossum sp.: 1 ej.

8 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

Aunque se observaron algunas hembras de

Pterella melanura (Meigen, 1824) (Diptera:

Sarcophagidae) persiguiendo a las hembras

de Cerceris sabulosa, no se encontraron larvas

parásitas dentro de los nidos excavados.

Descripción de la larva de

Cerceris bicincta

La descripción se basó en tres ejemplares fija-

dos en alcohol y tratados posteriormente con

KOH (10%, 70%C) para su estudio microscópi-

co, aunque las medidas facilitadas se refieren a

uno solo de los tres ejemplares estudiados. Las

abreviaturas empleadas en la descripción son:

a = anchura, al = altura, d = diámetro, l =

longitud.

Aspecto general

Cuerpo fusiforme (| = 14 mm; a = 4mm) (Fig.

2). Lóbulos pleurales bien desarrollados; dor-

so de los segmentos con un área oval elevada a

ambos lados de la línea mediodorsal. Segmen-

to anal formando una proyección cónica, con

el lóbulo supranal ligeramente mayor que el

infranal. e

Tegumento espinuloso en toda su superfi-

cie (Fig. 4), a excepción de las áreas ovales

dorsales, en donde es liso; también aparecen

algunas sedas dispersas, de tamaño ligera-

mente superior al de las espínulas. En el seg-

mento anal, las espínulas son menores en ta-

maño, apareciendo, además, un mayor núme-

ro de sedas.

Estigmas (d = 85-97 pm; x = 90; n = 10)

con las paredes del atrio recorridas por líneas

formadas por engrosamientos del tegumento

(Fig. 5); comunicación del atrio con el subatrio

desprovisto de espínulas.

Coloración general blanquecina pero son

marrón claro: estigmas, papilas antenales, pal-

pos maxilares y labiales, galeas e hileras; man-

díbulas marrón oscuro.

Cápsula cefálica

Cabeza más alta que ancha (a = 1,35 mm, al =

1,38 mm), con diversas punteaduras —de al-

gunas de las cuales emergen sedas— en el

clípeo, bordes laterales y parte superior. Ban-

das parietales ausentes. Sutura coronal bas-

tante larga (1 = 0,49 mm). Órbitas antenales

circulares (d = 90 um); antenas bien desarro-

lladas (1 = 55 pm; d = 20 um).

Piezas bucales

Mandíbulas (Fig. 6) (1 = 0,78 pm; a = 0,34

um) bidentadas, alargadas, con 4-5 sedas di-

minutas en la base.

Labro (Fig. 3a) (a = 0,48 mm; al = 0,3 mm)

con punteaduras y sedas (1 = 20 um) situadas

sobre todo en la mitad inferior, en donde apa-

recen también de 7-9 sensilas bien desarro-

lladas.

Epifaringe (Fig. 3b) espinulosa en su parte

inferior, con varias sensilas bien desarrolladas

en la zona medial. El centro de la epifaringe

presenta un área desprovista de espínulas y

papilas a cada lado, en donde aparecen de 5-7

poros sensoriales de tamaño bastante menor

que el de las sensilas.

Maxilas (Fig. 6) con el área lacinial espinu-

losa. Palpos maxilares (1 = 95 pm; a = 35 pm)

mucho mayores que las galeas (1 = 40 qm; a =

20 nm), que son, no obstante, bien conspicuas.

Labio papiloso en su cara oral (Fig. 7), con

las hileras (1 = 80 um; a = 40 jm) sobrepasan-

do en longitud a los palpos labiales (1 = 65 um;

a = 30 um).

DISCUSIÓN

Aunque la mayor parte de las especies del

género Cerceris capturan coleópteros como

presas, algunas especies propias de la Región

Paleártica emplean himenópteros para ali-

mentar a sus larvas. Sin embargo, las diferen-

cias que existen entre ellas en lo relativo al

comportamiento nidificador son mínimas,

siendo éste, por lo general, muy constante (Al-

cock, 1974; Elliot et al., 1981; Evans, 1971;

Evans y Rubink, 1978). Esta constancia viene a

ser confirmada, una vez más, por el comporta-

miento observado en C. bicincta y C. sabulosa,

muy similar al del resto de las especies del

género estudiadas hasta el momento. Á este

respecto cabe aclarar que C. sabulosa, como la

mayor parte de las especies del género, deja

durante el aprovisionamiento las presas en la

galería, rodeadas por arena suelta, para trans-

ferirlas posteriormente a la celda; no parece,

pues, que practique cierres internos de la cel-

da activa, tal como señaló Ferton (1910), quien

Asís et al.: Nidificación de dos especies de Cerceris 9

Figuras 2-7: Larva madura de C. bicincta: 2. Vista lateral; 3(a). Labro; 3(b). Epifaringe; 4. Tegumento (e = 20 pm); 5.

Estigma (e = 10 um); 6. Piezas bucales, cara oral (e = 100 jm); 7. Labio, cara oral (e = 50 pm).

10 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

probablemente confundió esta arena suelta

que rodeaba a las presas con un cierre interno.

Las observaciones realizadas sobre C. bicinc-

ta confirman algunos aspectos ya dados a co-

nocer por Tsuneki (1965), como son la nidifi-

cación en sustratos muy duros y el empleo de

crisomélidos como presas. A los dos géneros

citados por este autor como presas (Coptocep-

hala y Lobidostomis), hay que añadir otros tres:

Clytra, Cryptocephalus y Tituboea. A pesar de

ello, €. bicincta parece mostrar una cierta espe-

cificidad en la captura de presas, pertenecien-

do todas las encontradas hasta el momento a

géneros próximos.

El porcentaje de parasitismo observado en

C. bicincta (31% de las celdas estudiadas), es

similar al encontrado por Kurczewski y Miller

(1984) en Cerceris flavofasciata floridensis

Banks, 1915. A tenor de los observado en

otros Philanthinae (Evans y O'Neill, 1988), es-

ta cifra es bastante elevada, aunque, tal y como

demostraron Spofford et al. (1986) en otras

especies de la familia, los porcentajes pueden

fluctuar ampliamente entre distintas poblacio-

nes de una misma especie, según los enemigos

naturales que aparezcan en cada área de nidi-

ficación y las estrategias antiparasitarias desa-

rrolladas por cada especie.

AGRADECIMIENTOS

Queremos expresar nuestro agradecimiento a

S. Doguet por la identificación de los crisomé-

lidos, así como a J. Alcock (Arizona State Uni-

versity, USA) por la revisión del manuscrito

original. El estudio fue realizado con la ayuda

de la Conselleria de Cultura, Educació i Cién-

cia de la Generalitat Valenciana y del proyecto

Fauna Ibérica 1 (PB 87-0397).

LITERATURA CITADA

ALCOCK, J. 1974. The nesting behaviour of Cerceris simplex

macrosticta (Hymenoptera: Sphecidae). J. nat. Hist., 8:

645-652.

BoHarT, R.M., MENKE, A.S. 1976. Sphecid wasps of the

world. A generic revision. University of California

Press, Berkeley, 695 pp.

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ment of Cerceris halone (Hymenoptera: Sphecidae). J.

Kans. Entomol. Soc., 51(4): 818-831.

ELtiorr, N.B., ELLIOTT, W.M., SaLBERT, P. 1981. Nesting

behavior of Cerceris zonata (Hymenoptera: Philanthi-

dae). Ann. Entomol. Soc. Am., 74: 127-129.

Evans, H.E. 1971. Observations on the nesting behavior

of wasps of the tribe Cercerini. J. Kans. Entomol. Soc.,

44(4): 500-523.

Evans, H.E., O'NeiLL, K.M. 1988. The natural history

and behavior of North American beewolves. Cornell

University Press. Ithaca, N.Y. 278 pp.

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prey and nests of seven species of Cerceris (Hymenop-

tera: Sphecidae). Great Bas. Nat., 38(1): 59-63.

FerTON, C. 1905. Notes sur P'instinct des hyménoptéres

melliféres et ravisseurs 111. Ann. Soc. Entomol. Fr., 74:

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noptéres melliféres et ravisseurs IV. Ann. Soc. Ento-

mol. Fr., 79: 145-178.

Gess, F.W. 1980. Prey and nesting sites of some sympatric

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GRANDI, G. 1929. Contributi alla conoscenza biologica e

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Bol. Lab. Entomol. Bologna, 1: 258-326.

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tera: Sphecidae) by three species of Miltogrammini

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ris hortivaga Kohl. Etizenia, 9: 1-46.

Rev. Chilena Ent.

1991, 19: 11-15

ON SOME POORLY KNOWN, MISIDENTIFIED AND MISLABELLED

CHILEAN CHRYSOMELIDAE (COLEOPTERA)

INGOLF S. AsKEVvOLD!

ABSTRACT

Some species of Chilean Chrysometilidae have apparently been described from mislabelled specimens,

from accidental introductions, or from adventitious specimens of Argentinian or Peruvian species.

Hypolampsis melanotus Clark and Stethispa chilensis Pic are believed to be based on non-established taxa

that have been described from Argentina or Peru. Uroplata chilensis Pic was probably based on an

unestablished adventitious specimen from Argentina, and is placed as junior synonym of U. nigritarsis

Weise. Blepharida chiliensis Baly was probably based on a mislabelled specimen and is reduced to

synonymy of the Nearctic species, B. rhois (Forster). Phaedon rubripes Philippiand Philippi was based on

a mislabelled specimen or unestablished accidental introduction, and is placed as a junior synonym of

Gastrophysa polygoni (Linnaeus). Megalostomis gazella Lacordaire, Calligrapha curvilinea Stál, Disonycha

copulata Germar, Disonycha bicarinata Boheman, Disonycha argentinensis Jacoby and Diabrotica viridula

(Fab.) are not confirmed to have been collected in Chile and should be removed from faunal lists.

Xanthogaleruca luteola (Múller) is recorded from Chile for the first time, but is not verified as

established.

RESUMEN

Algunas especies chilenas de Chrysomelidae aparentemente fueron descritas en base a especímenes

con etiquetas de procedencia incorrectas, especímenes introducidos accidentalmente, o en base a

especímenes advenedizos de especies argentinas o peruanas. Se cree que Hypolampsis melanotus Clark y

Stethispa chilensis Pic fueron basadas en taxa no establecidas que también pueden haber sido descritas de

Argentina o Perú. Uroplata chilensis Pic probablemente fue basada en un ejemplar advenedizo de

Argentina no establecido, y se sinonimiza con U. nagritarsis Weise. Blepharida chilensis Baly probable-

mente fue basada en un ejemplar con etiqueta de procedencia incorrecta, y se sinonimiza con la especie

neártica B. rhois (Forster). Phaedon rubripes Philippi y Philippi fue basada en un ejemplar con etiqueta

de procedencia incorrecta o introducido accidentalmente y no establecido, y se sinonimiza con

Gastrophysa polygoni (Linnaeus). No se ha podido confirmar que Megalostomis gazella Lacordaire,

Calligrapha curvilinea Stál, Disonycha copulata Germar, Disonycha bicarmata Boheman, Disonycha argenti-

nensis Jacoby y Diabrotica viridula (Fab.) hayan sido colectadas en Chile, por lo que deberían removerse

de las listas faunísticas de este país. Se registra por primera vez la presencia en Chile de Xanthogaleruca

luteola (Múller), pero no se ha podido confirmar si esta especie ha logrado establecerse.

INTRODUCTION

During investigation of taxonomic problem

concerning the Chrysomelidae of Chile, type

specimens were examined of some taxa that

have not been collected in Chile subsequent to

original description. The Chilean chrysomelid

fauna is highly endemic and geographically

isolated from the remainder of the Neotropi-

'Entomology-Biological Control, Division of Agricul-

tural Sciences, Florida A 8: M University, Tallahassee, FL.

32307, USA. (Received: 26 October 1990. Accepted: 26

June 1991).

cal fauna (O'Brien, 1971), but it is not uncom-

mon for specimens of various non-Chilean

taxa to be found in Chile. For example, I have

examined Chilean specimens of Spintherophyta

Dejean, Systena Chevrolat and other genera

which seem to be more widespread Neotro-

pical species that have succeeded in arriving in

Chile but did not become established. In other

cases, the type specimen(s) of certain species

described from Chile clearly represent misla-

belled specimens because they are specimens

of neartic or Palaeartic species that have not

otherwise been collected in Chile. Some other

species have been listed in catalogues as occu-

12 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

rring in Chile, but have not been collected

there, as evidenced by lack of such specimens

in collections examined to date.

The present paper details the taxonomic

status of species that have been incorrectly

recorded from Chile, that have been descri-

bed from mislabelled specimens, or that have

been described from specimens that probably

occurred adventitiously in Chile and are not a

constituent of the endemic fauna. Í use the

term adventitious to mean individuals that ha-

ve, by some unknown means, been transpor-

ted into Chile from neighbouring countries by

prevailing climatic conditions, or accidentally

by humans.

Lectotype designations are made where ap-

propriate. Label data from type specimens are

recorded here verbatim: */” is stated to indicate

different labels borne by the type. Codens re-

fer to collections in which specimens are pre-

served (7.e. Chill MNHN, BMNH, MCZ, are

specified in acknowledgements). Taxa repor-

ted are detailed by subfamily.

Clytrinae

1. Blanchard (1851) figured and provided

a description of Megalostomis gazella La-

cordaire, stating this to be a species so

widespread in South America that it pro-

bably would be found in Chile also. Ho-

wever, no species of Clytrinae, save two

in the genus Dachrys, are known to occur

in Chile. This species, M. gazella, must

therefore be deleted from catalogues of

Chilean Coleoptera (e.g. Blackwelder,

1946) and faunal treatments (e.g. Peña,

1988) that include it.

Chrysomelinae

2. The holotype of Phaedon rubripes Philip-

pi and Philippi (1864:390) was exami-

ned, and found to belong to the Holarc-

tic genus Gastrophysa. 1t was compared

with specimens of G. polygon: (Linnaeus)

from Europe and North America, and

found to be indistinguishable in detail

from such specimens. No additional spe-

cimens of any species of Gastrophysa have

been found in collections of Chilean

Chrysomelidae. Therefore, the species

must be regarded as having been descri-

bed from either an unestablished intro-

duction or a mislabelled specimen. The

holotype (sex undetermined) (Chil)

bears the following label data: “1093. /

Typus [red] / Phaedon rubripes Ph.

p. 848 [pale blue, pencil] / Phaedon ru-

bripes Ph. Typus! [label by Kuschel] /

Chile M.N.H,N. Tipo N* 3113”. Th8

specimen is not in good condition, mis-

sing left antenna, left mid- and hindlegs,

and right elytron loose on pin.

3. Calligrapha curvilinea Stál (1859:325) was

described from Perú, and has been listed

in catalogues as occurring in Chile. No

species of this genus have been collected

in Chile and 1 have examined no speci-

mens of Chrysomelinae from Chile that

agree with Stál's description; therefore,

occurrence in Chile must be considered

unsubstantiated and it should be deleted

from faunal lists of Chile. I have not

been able to examine the type of this

species.

4. Chrysolina quadrigemina (Suffrian) and C.

hyperici Forst. are species that have been

introduced to various areas of North

America for biological control of Ayperi-

cum perforatum (e.g. Fields et al., 1988).

They were introduced to Chile in 1950,

but this is not widely known (Jerez pers.

comm. 1989).

Chrysolina quadrigemina has been collected at

the following localities: Bio-Bío: Mulchén.

Concepción: Chivilingo. Coquimbo (no speci-

fic locality). Malleco: Termas de Manzanar; 15

km. W. Victoria; 4 km. W. Victoria; Victoria.

Nuble: Chillán, Las Trancas; Invernada; Re-

cinto. Quillota: La Cruz. Talca: Alto Vilches.

Valdivia: Huellelhue; Panguipulli.

Chrysolina hyperici has not been widely collec-

ted. Jerez (1989, pers. comm.) provided me

with the following data, but I have not perso-

nally examined any specimens: Talca, Altos

de Vilches, diciembre 1970, T. Ramírez.

Galerucinae

No galerucines are confirmed to be endemic

to Chile. Some specimens have been found in

collections but with one exception these are

old collections without specific locality data.

Askevold: Mislabelled and poorly known Chilean Chrysomelidae 13

5-6. Two species of Diabrotica have been lis-

ted as occurring in Chile in catalogues

(Blackwelder, 1946; Krysan and Smith,

1987). Diabrotica viridana Baly

(1886:443) was described from Chile.

Smith and Lawrence (1967:141) place

this species in the D. virgifera-Group.

Krysan and Smith (1987) included D. v:-

ridana in their key to species of the D.

virgifera LeConte-Group but further

treatment of the name was given because

it is not a member of this species group

(Krysan pers. comm. 1990). I suspect

that it is not a species endemic to Chile

and was probably described separately

from another region of South America;

it may have been described from a mis-

labelled specimen.

Krysan and Smith (1987:415) gave only

' “Chili: (nfd)” [no further data] as distributio-

nal data of D. viridula (Fab.) (based on a single

| specimen, MCZ - Krysan, pers. comm. 1990). I

think Diabrotica viridula should be deleted

from lists of Chrysomelidae occurring in Con-

tinental Chile? because the record is an

' unsubstantiated, old occurrence or mislabe-

¡ lled specimen.

7. A single specimen of Xanthogaleruca lu-

teola (Múller) was examined, labelled

“Valparaíso, Ritoque, 17.APR.1982

(Chil). This species typically uses Ulmus

as a host plant, and has been introduced

to North America. This single specimen

may represent an introduction to Chile,

but no additional specimens have been

found.

Alticinae

| 8-10.Disonycha copulata Germar was described

from Argentina, and listed in catalogues

as occurring in Chile (e.g. Blackwelder,

1946). Da Costa Lima (1954) listed no

species occurring in Chile, but Blake

(1955) gave “Chile: Germain” (no speci-

fic location) for three species: D. bicarima-

ta Boheman (p. 12), D. argentinensis Jaco-

“Previously cited 4s present in Easter Island (Campos,

L. y L. Peña. Rev. Chilena Ent., 7: 217-229, 1973); it 1s

necessary confirm this record.

by (p. 71), and D. copulata Germar

(p. 68). Vogt et al. (1979) did not include

Chile or any adjacent areas in the distri-

bution of D. argentinensis. The type of D.

copulata was not found in Berlin by Blake

(1955:68), nor more recently (Hieke,

pers. comm. 1989), and is presumed lost.

No specimens of any Disonycha have been

found that have been collected in Chile.

It is possible that catalogues refer to an

apparently undescribed species of Asp-

haera which is similar in colour and ely-

tral pattern to Disonycha species, and to

the Chilean Kuschelina decorata (Blan-

chard).

11. Aypolampsis melanotus Clark (1860:233)

was described from Chile. No other spe-

cimens of this widespread New World

genus have been collected in Chile and 1

conclude that it was probably described

from an adventitious specimen. The spe-

cies should be deleted from catalogues,

though it may well be a valid name for

some other Neotropical species. The ho-

lotype is preserved in BMHN: “67.56 /

Type [red trim disc] / H. melanotus

CIk.”. The specimen bears no locality da-

ta, but Clark (1860) stated “Chili ex coll

Chevrolat” and may simply have been

mistaken.

12. Blepharida chiliensis Baly (1865:432) was

described from Chile. The holotype Y

was examined, and was found to be

indistinguishable in detail from North

American (Illinois) specimens of Blepha-

rida rhois (Forster) in my collection (this

was confirmed by D. Furth, MCZ; pers.

comm., 1991). The specimen should be

considered as having been mislabelled,

and is hereby reduced to a junior syno-

nym of B. rhoiws. The holotype (BMN H)

bears the following label data: “Type

H.T. [red trim disc] / Baly Coll. / Blepha-

rida chiliensis Baly Chili [bluish]”.

Hispinae

Pic (1933a8cb) described two hispines from

Chile, Uroplata chilensis and Stethispa chilensis.

The holotype of each species keys to these

genera in Monrós and Viana (1947), and

14 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

agrees in structure with descriptions of those

genera presented by these authors. Thus, the-

se taxa can be considered as correctly assigned

to genus but their taxonomic validity must be

doubted because no other specimens of the

subfamily Hispinae have been collected in

Chile.

13. Uroplata chilensis Pic (1933a:293) keys to

U. nigritarsis Weise in Monrós and Viana

(1947), and agrees with the description

and figure provided. It has not been pos-

sible to examine the type of Weise's spe-

cies, because it is not preserved in Berlín

(Hieke, pers. comm. 1989). A few addi-

tional specimens of this species have ap-

parently been collected in Chile [labelled

simply “Chile: Germain” (MCZ 3) and

“Pampas: Germain” (MCZ 1). However,

specimens apparently collected in Chile

are very likely adventitious individuals

from Argentina and not established.

Uroplata chilensis Pic is hereby placed as

junior synonym of U. nigritarsis Weise; it

should be considered deleted from cata-

logues of Chilean Coleoptera.

The holotype (MNHN, sex undetermined)

bears the following label data: “Chili / Uropla-

ta probable / ou Octhispa / Museum Paris Coll.

M. Pic [greenish, added by N. Berti / Uroplata

chilensis n sp / Holotype Uroplata chilensis Pic

[red, added by me)”.

14. Stethispa chilensis Pic (1933b:36) keys,

with difficulty, to this genus in Monrós

and Viana (1947), but agrees well with

the description of the genus. It does not

correspond to either of the two species

treated by these authors, and therefore

is probably not an Argentinian species.

Uhmann (1957) listed 18 species in the

genus; it is possible that Pic's species co-

rresponds to the Peruvian species S. bon-

vouloiri Baly, but this has not been ascer-

talned.

The holotype (MNHN, sex undetermined)

bears the following label data: “Chili [pencil] /

type [yellowish] / type [red, added by N. Berti]

/ Museum Paris Coll. M. Pic [greenish], chilen-

sis n sp / Holotype Stethispa chilensis Pic [red,

added by me]”. The specimen lacks the right

apical elytral spine and right protarsus.

ACKNOWLEDGEMENTS

Mario Elgueta D., Sección de Entomología,

Museo Nacional de Historia Natural, Casilla

787, Santiago, Chile (Chil), Nicole Berti, La-

boratorie d'Entomologie. Muséum National

d'Histoire Naturelle, 45 Rue de Buffon, Paris

75005 (MNHN). Sharon L. Shute, Depart-

ment of Entomology, British Museum of Na-

tural History, Cromwell Road, London SW”

5BD (BMNH) and F. Hieke, Museum fúr Na-

turkunde der Humboldt-Universitát zu Ber-

lin, Invalidenstr. 43, 1040 Berlin are owed

many thanks for their continued cooperation

and loan of relevant types of Chilean taxa. 1

thank Mauro Daccordi, Verona, for verifying

determination of specimens of Chrysolina qua-

drigemina, Viviane Jerez R. for providing some

information concerning the species of Chryso-

lina, D.G. Furth for verifying identification of

B. chiliensis and G.J. Wibmer for useful com-

ments on the manuscript and providing a:

translation of the abstract. Work toward this

publication has been supported in part by.

NSERC grant N* A0428 to Dr. Robert E.

Roughley, Department of Entomology, Uni-

versity of Manitoba, Canada.

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Rev. Chilena Ent.

1991, 19: 17-27

THE AMERICAN GENERA OF ASILIDAE (DIPTERA):

KEYS FOR IDENTIFICATION WITH AN ATLAS OF FEMALE SPERMATHECAE AND

OTHER MORPHOLOGICAL DETAILS.

VII.5. SUBFAMILY STENOPOGONINAE HULL - TRIBE TILLOBROMINI,

WITH DESCRIPTIONS OF THREE NEW GENERA AND TWO NEW SPECIES AND

A CATALOGUE OF THE NEOTROPICAL SPECIES'

JorGE N. ArTIGAS” Y NELSON PAPAVERO”

ABSTRACT

A key for the identification of the 7 genera of American Tillobromini (Asilidae, Stenopogoninae), with

illustrations of female spermathecae and other morphological details, is given. The following new taxa

are described: Grajahua lopes:, gen. n., sp. n. (type-locality: Brazil, Rio de Janeiro, Rio de Janeiro

(Grajaú); Scylaticina tucumana, gen. n., sp. n. (type-locality: Argentina, “Tucuman, San Pedro de

Colalao); and Scylaticodes, gen. n. (type-species, Dasypogon chilensis Macquart, 1850). A catalogue of the

neotropical species, with several new combinations, is added.

Keywords: Insecta. Taxonomy. America. Key. Asilidae. Stenopogoninae. Tillobromini.

RESUMEN

Se presenta una clave para la identificación de los 7 géneros americanos de Tillobromini (Diptera,

Asilidae, Stenopogoninae), con ilustraciones de espermatecas y otros detalles morfológicos. Los

siguientes nuevos taxones son descritos: Grajahua lopesi, gen. n., sp. n. (localidad-tipo, Brasil, Rio de

Janeiro, Rio de Janeiro (Grajaú), Scylaticina tucumana, gen. n., sp. n. (localidad-tipo, Argentina,

Tucuman, San Pedro de Colalao), y Scylaticodes, gen. n. (especie-tipo, Dasypogon chilensis Macquart,

1850). Se agrega un catálogo de las especies neotropicales, con varias nuevas combinaciones.

INTRODUCTION

This 1s part of a series of papers dealing with

the American genera of Asilidae, with illustra-

tion of spermathecae and other morphologi-

cal details. Previous instalments of this series

comprise the following parts: I (Key to subfa-

milies, subfamily Leptogastrinae): Gayana

'This research was supported by the Fundacáo de

Amparo a Pesquisa do Estado de Sáo Paulo (Grants 85/

1772-5, 86/3327-1 and 87/3170-8). :

Universidad de Concepción, Facultad de Ciencias

Biológicas y de Recursos Naturales, Departamento de

Zoología (MZUC), Casilla 2407, Concepción-Chile

(Proyecto Dirección de Investigación, U. de Concepción,

N” 203812).

Museu de Zoologia 8c Instituto de Estudos Avanca-

dos, Universidade de Sáo Paulo. Pesquisador do Conselho

Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico

(CN Pq, Proc. N” 30.0994/79).

(Recibido: 15 de enero de 1991. Aceptado: 25 de abril

de 1991.)

Zool. 52(1-2): 95-114, 1988; 11 (Dasypogoni-

nae): Gayana Zool. 52(3-4): 199-260, 1988; IM

(Trigonomiminae); Bol. Soc. Biol. Concep-

cion 60: 35-41, 1988; IV (Laphriinae, except

Atomosiini): Bol. Mus. Paraense Emilio Goel-

di, Zool. 4(2): 211-255, 1989; V (Stichopogini-

nae): Bol. Soc. Biol. Concepcion 61: 39-47,

1990; VI (Laphriinae, Atomosiini): Gayana

Zool. 55(1): 53-85, 1991; VII.1 (Stenopogoni-

nae, key to tribes): Gayana Zool. 55(2): en

prensa; VII.2. (Stenopoginae, tribes Acrony-

chini, Bathypogonini, Ceraturgini): Gayana

Zool. 55(3): en prensa; VII.3 (Stenopogoni-

nae, tribes Dioctriini, Echthopodini): Gayana

Zool. 55(4): en prensa; VII.4 (Stenopogoni-

nae, Enigmomorphini): Bol. Soc. Biol. Con-

cepcion 62: en prensa. The materials studied

in this paper belong to the collections of the

Museu de Zoologia da Universidade de Sao

Paulo and to the Departamento de Zoologia

de la Universidad de Concepcion. The metho-

Rev. Chilena Ent. 19. 1991

dology employed in the dissection and preser-

vation of the male terminalia, female spermat-

hecae and other morphological parts is the

some employed by Artigas (1971).

Tribe TILLOBROMINI Artigas €e Papavero

Key to the genera

3(2).

4(3).

Slender, bare flies. Abdomen long and slender,

narrower than thorax and coarctate (at least on

second abdominal segment)). Mystax thin, in only

one row, confined to oral margin (Figs. 1-2). Scute-

llum bare of hairs and bristles. Proboscis tapering

to the apex, as long as mystax, pointed apically and

bent downwards (Fig. 1). Face parallel-sided

(Fig. 2) Legs very long and slender (Fig. 4). (Brazil:

Rod anco Grajahua, gen. n.

More robust, pilose, or more or less bare flies.

Abdomen more or less flattened, short and robust,

almost as wide as thorax. Other combinations of

TECOS 0 ae O alo lindo 2

Mystax of variable shape, but always with mixed

bristles and hairs. Anterior dorsocentral bristles, if

present, mixed with more or less abundant, mode-

rately long pile (South America) ............- 3

Mystax consisting of very strong, stiff bristles,

extending from oral margin to base of antennae.

Dorsocentral bristles also very strong, beginning

on the anterior slope of mesonotum. Thorax and

head without pile, all bristles stiff and evident.

Spermathecae a long, slender, coiled tube (Figs.

5-6). (Western North America) ................

E AA Coleomya Wilcox 8e Martin, 1935)

Face either evenly rounded or from slightly to mo-

derately prominent, but never strongly gibbose

and first flagellmere never as below ......... 4

Face strongly gibbous and first flagellomere narro-

wed on lower third or half and then suddenly ex-

panded above middle (cf. Artigas, 1970: Figs. 87,

101, 115). Male terminalia as in Artigas (1970: Figs.

88, 90-91, 92-99, 100, 102-106, 107-114, 116-117,

119-121, 122-126, 129). Spermatheca as in Artigas

(1971: Figs. 46, 48, 50, 52, 53, 56): capsule elonga-

te, somewhat thickened, coiled. (Peru, Bolivia,

southern Brazil, Argentina, Chile) .............

A Tillobroma Hull, 1962, n. status

Mystax occupying lower 2/3 of face or more (Figs.

8-9). Spermathecae with more or less rounded cap-

sul (ges O A eE Ed: 5

Mystax thick but confined to oral margin and pro-

boscis long and thick, longer than mystax (almost

surpassing tip of atennae) (Fig. 7). Face produced

at oral margin, forming a thich triangle in profile

(Fig. 7). Spermathecae with more or less falciform

elongate capsules (Artigas, 1971: Fig. 66). (Chile,

ALEC e Euthrixius Artigas, 1971

Proboscis much longer than mystax (Fig. 8). Face

almost triangularly produced, in lateral view, on its

lower 2/3 (Fig. 8). Male terminalia as in Artigas

(1970: Figs. 152-153, 155-156, 157-158). Spermat-

hecae as in Artigas (1971: Fig. 63). (Chile). .....

E A lO Ernie Seylaticodes, gen. n.

Proboscis shorter than length of mystax (Fig. 9).

BHacepnonastabove ie 6

Cell m3 closed, with a long petiole. Face with a

flattened gibbosity occupying 4/5 of its height, a

shallow concavity between gibbosity and base of

antennae. First flagellomere subequal in length to

combined length of scape and pedicel. Spermathe-

cae as in Figs. 10-11. (Peru) Zabrotica Hull, 1962

Cell m3 open. Face more or less flat, only very

gradually sloping from base of antennae to oral

margin (Fig. 9). First flagellomere more or less twi-

ce combined length of scape and pedicel. Male

terminalia and aedeagus as in Figs. 12-16. Sper-

mathecae as in Fig. 17. (Argentina: Tucuman) ..

A a o Seylaticina, gen. n

Genus Euthrixtus Artigas

Euthrix Philippi, 1865: 690 (preocc. Melgen,

1830). Type-species, Dasypogon venustus

Philippi (Martin 8: Papavero, 1970: 17).

Euthrixius Artigas, 1971: 22 (nom. nov. for

Euthrix Philippi). Type-species, Dasypogon

venustus Philippi (aut.).

List of species:

distinguendus (F. Lynch Arribálzaga) im E.

Lynch Arribálzaga, 1881: 121 (Scylaticus).

Type-locality: Argentina, Buenos Aires,

Chacabuco. T'P lost. N. COMB.

rufipes (Philippi), 1865: 691 (Dasypogon). Ty-

pe-locality: “Chile”. Distr. Chile (Aconca-

gua, Curico, Valparaiso). Ref. Artigas,

1970: 178. (Figs. 159, 161-163, 451). NT

DZUC.

philippa Schiner, 1868: 163 (Scylaticus). Ty-

pe-locality: “Chile”. TP WIEN.

rubripes Bigot, 1878: 435 (Scylaticus). Type-

locality: “Chile”. TP OXF.

venustus (Philippi), 1865: 689 (Dasypogon). Ty-

pe-locality: Chile, Santiago, Distr. Chile

(Coquimbo, Santiago, Valparaiso). Ref. Ar-

tigas, 1970. (Figs. 151, 160, 164, 4927). NT

DZUC.

Artigas € Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 19

Figures 1-4: Grajahua lopest, gen. n., sp. n. 1, head, lateral view. 2, same, frontal view. 3, antenna. 4, hind leg. (scale in mm).

Genus Grajahua gen. n.

Face 1/4 width of head, frons of similar width.

Internal margin of eyes nearly parallel. Upper

half of face produced. Mystax reduced to a

row of 8-10 bristles, restricted to oral margin.

Frontal bristles absent; 2 ocellar bristles: post-

ocular bristles short, scattered, forming a li-

ne. Antennae implanted on upper 1/3 of

head; pedicel slightly longer than scape; first

flagellomere similar in length to combined

length of scape and pedicel, wider on middle;

second flagellomere minute, excavated dorsa-

lly, with a spine on center. Proboscis short,

bulbose at base, strongly tapered, apex acute,

apical half gently curved down, reminiscent of

the proboscis of Ancylorrhynchus Macquart.

Palpi 2-segmented.

20 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

Figures 5 £c 6: Coleomyia setigera (Cole). 5, situation of the spermathecae in the abdomen. 6, spermathecae (scale in mm).

Artigas 8c Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 21

Prosternum dissociated from proepister-

num. Pronotum with a row of bristles similar

to the postocellar ones. Mesonotum flat, shi-

ning, glabrous; presutural dorsocentral bris-

tles minute, 2-3 pairs of strong postsutural

bristles; humerals absent; 1 supraalar, 1 post-

alar and 1 postcallar. Disc of scutellum gla-

¡ brous, no marginal scutellar bristles. No bris-

tles on mesopleura. Anatergite bare. Katater-

gite with a row of 5-7 long bristles. Thorax

mostly glabrous and shining.

Legs very long and slender, with minute

fine hairs, a few fine bristles on tibiae and

tarsl; basitarsus as long as remaining tarsome-

res together. Claws fine, small, acute. Pulvillus

reaching tip of claws.

Wing with cell r, open; R¿ ends at wing

apex, R; ends far below apex; anal cell open.

Abdomen narrower than thorax, second

segment coarctate, the abdomen tapering

from segment 6. Integument smooth, shining,

with fine scattered minute hairs. Ovipositor

with strong spines on acanthophorites.

Male unknown.

Type-species, Grajahua lopest sp. n.

Grajahua lopesi sp. n.

Total length, 13 mm; wing length, 13 mm;

wing width, 3.5 mm.

Female. Face shining light-brown on upper

half, lower half covered with silvery micropi-

losity which extends partially along anterior

border of eyes until vertex. Ocellar triangle

darker, ocelli white; the 2 ocellar bristles

black. Mystax with yellow bristles. Postocular

bristles black. Pedicel with a few short black

bristles; first flagellomere similar in color to

scape and pedicel, with a long black area on

dorsal basal half where there are short black

bristles directed forwards; second flagellome-

re 1/10 length of first, with a minute black

spine on center of dorsal excavation.

Pronotum brownish, glabrous, with a row

of short black bristles. Mesonotum shining-

brown, glabrous, dorsocentrals yellow, minu-

te, except for 2-3 pairs of postsuturals, which

are slightly longer; along the dorsocentrals

line there exists silvery micropubescence, for-

ming 2 narrow silver lines along mesonotum.

Humeral callus shining, bare, Supraalar, post-

alar and postcallar bristles black. Most pleural

segments with silvery micropubescence on

posterior border. Bristles of katatergite ye-

llow. Scutellum shining-brown, bare.

Legs lighter than body, covered with short

yellow hairs; anterior tibia and basitarsus dar-

Ker then remaining legs. Front and hind tarso-

meres 2-5 whitish, with whitish fine short

hairs. Claws black on apical 2/3, pulvilli whi-

tish.

Wing hyaline, except on costal, subscostal,

and ry cells (the latter only at base), and apical

1/4, which are dark brown.

Abdomen brown.

Holotype Y. Brazil, Rio de Janetro: Rio de

Janeiro (Grahaú), 10.vi11.1941 (H.S. Lopes), in

the MZUSP.

The specific name represents a homage to

Prof. Dr. Hugo de Souza Lopez, who collected

this interesting fly.

Genus Scylaticina gen. n.

Face 1/4 width of head, its sides nearly para-

llel. Frons wider than face. Facial gibbosity

occupying most of face. Frontal bristles simi-

lar to the ocellar ones. Vertical and post-

vertical bristles medium-sized. Antennae si-

tuated on upper 1/4 of head; scape twice as

long as pedicel, both with similar sized bristles;

first flagellomere 2 times as long as scape plus

pedicel, without strong hairs of bristles; se-

cond flagellomere small, depressed, as long as

wide, dorsaly excavated, with a minute spine

on center. Proboscis short, cylindrical, abrup-

tly depressed on apical 1/3. Palpi two-

segmented, second segment pointed. Face in

profile more or less flattened, only very gra-

dually sloping from base of antennae to oral

margin (Fig. 9), mystax occupying lower 2/3

of face or more.

Pronotal bristles similar to the postocular

ones. Prosternum dissociated from proepis-

ternum, bare. Mesonotum with scattered mi-

nute hairs; presutural dorsocentral bristles

short, indistinct, postsuturals longer, in 1-3

pairs; no strong bristles on humeral callus, 1-2

supraalars, 2-3 postalars, and 2-3 postcallar

bristles. Disc of scutellum bare, 1-4 pairs of

marginal scutellar bristles. No bristles on me-

sopleura. Anepisternum bare. Katepisternum

with bristles.

22 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

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47 4

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Figures 7-9: Head, lateral view: 7, Euthrixtus sp. 8, Scylaticodes chilensis (Macquart), n. comb. 9, Seylaticina tucumana, gen. n.,

sp. n. (scale in mm).

Artigas 8 Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 23

Front leg with first tarsomere subequal in

length to tarsomeres 2-4 together; tarsomeres

2-4 subglobose. Claws acute. Pulvillus rea-

ching 3/4 of claws.

Wing with cell r, open; R4 ends at wing

apex; R, ends below apex; anal cell slightly

open or closed at wing margin; cell m3 open.

Abdomen as wide as mesonotum, cylindri-

cal; 7 tergites visible in the male, 8 in females.

Male terminalia rotated almost 1809; apandria

divided, gonopods shorter than epandria; hy-

pandrium free, shorther than gonopods, ter-

minalia exposed in ventral view; aedeagus

hard, apex simple, curved at tip (Figs. 12-16).

Ovipositor with spines on acanthophorites.

Spermatheca with hard elongated capsules,

capsular ducts very fine (Fig. 17).

Type-species, Scylaticina tucumana sp. n.

Seylaticina tucumana Sp. n.

Total length, 10-13 mm.

Margins of face golden micropubescent; cen-

ter shining black. Mystax black. Tip of pedicel

and scape shining black, with short black bris-

tles; first flagellomere bicolorous, mostly red-

dish-brown on ventral half and black on dor-

sum and apical half; second flagellomere mi-

nute, dark, deppressed and excavated, with a

short spine on center. Frontal, ocellar and

postvertical bristles similar, black, with a few

white bristles intermingled on postvertical

area. Postocular area with abundant short

black bristles all over. Proboscis shining black.

Hairs of beard and proboscis wrinkled on api-

cal half.

Pronotum black, mostly covered with silve-

ry and yellow micropubescence; pronotal bris-

tles abundant, black, similar to the post-

verticals. Propleura with abundant black bris-

tles and hairs. Mesonotum black, with a broad

line of golden micropubescence on sides, pos-

teriorly to humeral callus, as well as on hume-

ral callus. Disc of mesonotum with short, very

fine, white, scattered hairs; dorsocentrals

white, very short on presutural area, longer

on postsutural; humeral callus with fine white

hairs; supraalar, postalar and postcallar bris-

tles white. Disc of scutellum bare, 2 pairs of

long white marginal scutellar bristles. Meso-

pleura black, with areas of golden micro-

pubescence and fine white hairs. Anepis-

ternum and mesepisternum bare, with golden

micropubescence. Katepisternum with 7-9

white bristles.

Coxas covered with micropubescence and

abundant white hairs. Legs shining black,

hind tibia dark reddish-brown with fine white

short hairs; bristles mostly fine, white. Tarsal

bristles black.

Wing brownish, darker on costal area; veins

brownish.

Abdomen dull black, with bands of golden

micropubescence on posterior margin of ter-

gites; on tergites 2-3 these posterior bands of

pubescence extend forwards almost to middle

of tergite. Hairs short, white, scattered on ter-

gites 1-3, black on tergites 4-6; sides of tergites

1-3 with abundant white hairs.

Male terminalia black, with fine hairs.

Female: similar to male. Legs lighter and with

golden micropubescence more abundant on

tergites 5-6; on tergite 5 often covering most

of the tergite. Ovipositor shining black, spines

on acanthophorites black.

Holotype 3, Argentina, Tucuman: San Pedro

Colalao, 11. 1949 (M. Arnau), in the IML.

Paratypes: 9 3 and 13 2, same data as Ho-

lotype; 1 $, same locality, no date (Dirings);

1 2, same locality, Depto. Trancas, x11.1950

(Arnau); and 1 3, Argentina, Tucuman: Taca-

nas, 6.x11.1946 (Golbach). In IML, DZUC,

MZUSP, MZUC.

Genus Scylaticodes gen. n.

Face 1/4 width of head, wider below than abo-

ve. Frons wider than face at antennal level.

Facial gibbosity well-developed, occupying ba-

sal 3/4 of face; in profile almost triangularly

produced on its lower 2/3 (Fig. 8). Mystax oc-

cupying 2/3 or more of face. Lateral frontal

bristles shorter than bristles of mystax, procli-

nate, similar to ocellar bristles. Postocular

bristles abundant, gently curved forward. An-

tennae placed slightly over middle distance

between oral margin and ocelar triangle; sca-

pe and pedicel similar in length, first flagello-

mere 1.5 times length of scape plus pedicel;

second flagellomere minute, excavated, wita

small spine on middle. Probuscis straight, cy-

1991

19,

Chilena Ent.

Rev.

CO >

000141 MEE

NOA MANQU

AMO

situation of the spermathecae in the abdomen. 11, spermathecae (scale in mm).

Figures 10 £c 11: Zabrotica clarker Hull. 10

Artigas 8 Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 25

Figures 12-17: Scylaticina tucumana, gen. n., sp. n. 12-14, male terminalia, in lateral, ventral and dorsal views. 15-16,

aedegus, in lateral and dorsal views. 17, spermathecae (scale in mm).

lindrical. Palpus 2-segmented; if extended

reaching middle of proboscis.

Mesonotum slightly convex, covered with

short, reclinate hairs; dorsocentral bristles

present only postsuturally, long, similar to ot-

her abundant bristles on postsutural area;

supraalar, postalar, postcallar and marginal

scutellar bristles also similar. Disc of scutellum

bare; 2-3 pairs of marginal scutellars. Anepis-

ternum bare. Katepisternum with long bris-

tles.

Legs similar in shape, hind pair larger. Ves-

titure of legs similar. Claws acute, pulvilli rea-

ching 3/4 of claws.

Wing with Ra slightly recurrent, or not, en-

ding before wing apex; R; ending below wing

apex; cell m3 open; anal cell slightly open or

almost closed at wing margin.

Abdomen narrower than thorax, cylindri-

cal, 7 segments visible in males, slightly tape-

red after segment 5. Male terminalia straight

to rotated 90%; epandrium separated into two

plates; hypandrium free; aedeagus simple,

sigma-shaped, with a simple apex (Artigas,

26 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

1971: Fig. 64). Ovipositor with strong spines

on acanthophorites. Spermatheca with 3 glo-

bose capsules at the end of fine ducts (Artigas,

971 ig 63):

Type-species, Dasypogon, chilensis Macquart,

1850

List of species:

carrascor (Artigas), 1974: 5, Figs. 1-10 (Scylata-

cus). Type-locality: Peru, Cuzco, Urubam-

ba. Distr. Peru (Cuzco, Puno), Chile (Arica).

HT DZUC. N. COMB.

chilensis (Macquart), 1850: 48 (Dasypogon). Y y-

pe-locality: “Chile”. Distr. Chile (Coquim-

bo, O'Higgins, Santiago). Ref. Artigas,

(9708 12 (Mes. lá, 12 015 1 E 00)

TP MNHNP. N. COMB.

tricolor Philippi, 1865: 688 (Dasypogon). Yy-

pe-locality: Chile, Colchagua. TP. SANT.

cuneigaster (Artigas), 1970: 174, Figs. 150, 153,

156, 429 (Scylaticus). Type-locality: Chile,

Atacama, Carrizal Bajo, Quebrada Algodo-

nes. Distr. Chile (Atacama). HT DZUC. N.

COMB.

lugens (Philippi), 1865: 689 (Dasypogon). Type-

locality: Chile, Colchagua. Distr. Chile

(Santiago, Talca, Valparaiso). Ref. Artigas,

1070 170, ¡Mes ELL 0 IN,

DZUC.

Genus Tillobroma Hull

Clavator Philippi, 1865: 699 (preocc. Martens,

1860). Type-species, punctipenms Philippi

(Hull, 1962: 152).

Hypenetes, subg. Tillobroma Hull, 1962: 154.

Type-species, Clavator punctipennis Philippi

(Orig. des.).

List of species:

asiliformis (Wulp), 1882: 101 (Hypenetes). Ty-

pe-locality: “Argentina”. N. COMB.

critesi (Artigas), 1970: 128, Figs. 92, 93, 95, 97,

428 (Hypenetes). Type-locality: Chile, Ay-

sen, Balmaceda, Distr. Chile (Arauco), Ay-

sen, Bio-Bio, Cautin, Curico, Linares, Ma-

lleco, Nuble, Valdivia). HT DZUC. N.

COMB.

davidsoni (Artigas), 1970: 130, Figs. 94, 96, 98,

99, 420 (Hypenetes). Type-locality: Chile,

Cauquenes. Distr. Chile (Concepción. Curi-

fucosus (Artigas), 1970: 134, Figs. 102, 106,

fulvicornis (Macquart), 1846: 195 (1846:67),

có, Linares, Maule, Nuble, O'Higgins, San-

tiago, Valparaíso). HT DZUC. N. COMB.

digitatus (Artigas), 1970: 132, Figs. 100, 101,

103-105, 484 (Hypenetes). Type-locality:

Chile, Lota-Coelemu. Distr. Chile (Arauco,

Cautin, Concepcion, Malleco, Santiago,

Valparaiso). HT DZUC. N. COMB.

107, 109, 468 (Hypenetes). Type-locality:

Chile, Cord. Nahuelbuta, Pichinahuel.

Distr. Chile (Arauco, Nuble). HT DZUC. N.

COMB.

pl. 7, Fig. 6 (Dasypogon). Type-locality:

“Brazil”. Distr. Peru, Brazil (Rio de Janeiro,

Sáo Paulo, Santa Catarina). TP MNHNP.

N. COMB.

magellanicus (Artigas), 1970: 136, Figs. 108,

110-112, 418 (Hypenetes). Type-locality:

Chile, Magallanes, cerro Guido. Distr. Chi-

le (Magallanes). HT DZUC. N. COMB.

obtusus (Engel), 1929: 472 (Hypenetes). Type-

locality: Bolivia, cordillera de Buenavista, s.

of Cuevo. Distr. Peru, Bolivia, Brazil (Sáo

Paulo, Parana), Argentina, N. COMB.

punctipenmas (Philippi), 1865: 699, pl. 26, Figs.

31,31a-b (Clavator). Type-locality: “Chile”.

Distr. Chile (Arauco, Bio-Bio, Linares, Ma-

lleco, Ñuble, Santiago), Argentina. NT

DZUC. N. COMB.

schineri (Artigas), 1970: 139, Figs. 118-123,

125, 493 (Hypenetes). Type-locality: Chile,

Rancagua. Distr. Chile (O'Higgins, Valpa-

raliso). HT DZUC. N. COMB.

valentine: (Artigas), 1970: 141, Figs. 124, 126,

127, 129, 419 (Hypenetes). Type-locality:

Chile, Coquimbo. Distr. Chile (Aconcagua,

Coquimbo, Concepción, Nuble, O'Hig-

gins). HT DZUC. N. COMB.

Genus Zabrotica Hull

Zabrotica Hull, 1958: 253. Type-species, clarkez

Hull (orig. des.).

clarkei Hull, 1958: 254. Type-locality: Peru,

Oroya. TP USNM.

Unplaced and unrecognized Tillobromini

cruciger Hermann, 1921: 119 (Scylaticus). Ty-

pe-locality: “Paraguay”.

Artigas € Papavero: The American genera of Asilidae - Tillobromini 207

nitidigaster Macquart, 1850: 373 (1850: 69)

(Dasypogon). Type-locality: “Chile”. TP lost.

(Placed in Seylaticus by Stuardo (1846: 81)

and Hull (1962: 145)).

INDEX

(Synonyms in italics)

asiliformis (Wulp), 1882 (Hypenetes), Tillobroma 26

carrascol (Artigas), 1974 (Scylaticus), Scylaticodes 26

chilensis (Macquart), 1850 (Dasypogon), Scylati-

codes 26

clarkei Hull, 1958, Zabrotica 26

Clavator Philippi, 1865 26

Coleomya Wilcox 8: Martin, 1935 18

critesi (Artigas), 1970) (Hypenetes), Tillobroma 26

cruciger Hermann, 1921 (Scylaticus), unplaced

taxon 26

cuneigaster (Artigas), 1970 (Scylaticus), Scylaticodes 26

davidsoni (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26

digitatus (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26

distinguendus (F. Lynch Arribálzaga), 1881 (Scylati-

cus), Euthrixius 18

Euthrix Philippi, 1865 18

Euthrixius Artigas, 1971 18

fucosus (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26

fulvicornis (Macquart), 1846 (Dasypogon), Tillo-

lugens (Philippi), 1865 (Dasypogon), Scylaticodes 26

magellanicus (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillo-

broma 26

nitidigaster Macquart, 1850 (Dasyvpogon), unplaced

taxon 27)

obtusus (Engel), 1930 (Hypenetes), Tillobroma 26

philippu (Schiner), 1868 (Scylaticus), Euthrixius 18

punctipennis (Philippi). 1865 (Clavator), Tillobroma. 26

rubripes (Bigot), 1878 (Scylaticus), Euthrixius 18

rufipes (Philippi), 1865 (Dasypogon), Euthrixius 18

schineri (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26

Scylaticina, gen. n. 24

Scylaticodes, gen. n. 23

Tillobroma Hull, 1962 96

tricolor (Philippi), 1865 (Dasypogon), Scylaticodes 96

tucumana, sp. n., Scylaticina. 23

valentinei (Artigas), 1970 (Hypenetes), Tillobroma 26

venustus (Philippi), 1865 (Dasvpogon). Euthrixius 18

broma 26

, Zabrotica Hull, 1958 26

Grajahua, gen. n. 19

lopesi, sp. n., Grajahua 21

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HERMETISMO EN SOCIEDADES DE CAMPONOTUS MOROSUS SMITH, 1858

(HYMENOPTERA, FORMICIDAE) EN NIDOS ARTIFICIALES!

Joaquín H. Ipinza ReGLA?, A. Lucero” y M.A. MORALES

RESUMEN

Se estudia la influencia que presenta el olor social en interacciones de sociedades homoespecíficas de

Camponotus morosus en nidos artificiales.

ABSTRACT

The influence of social odor in Camponotus morosus homospecific societies is studied in artificial nests.

INTRODUCCIÓN

Los mecanismos de reconocimiento colonial

estarían sustentados por señales que pueden

ser visuales, sonoras y táctiles-olfativas. Como

resultado de diversos estudios, se sugiere que

la comunicación interindividual entre las hor-

migas está basada en marcadores químicos,

detectables principalmente a nivel de las ante-

nas, donde se encuentran los receptores del

olfato (Isingrini € Lenoir, 1986; Jaisson,

1985; Goetsch, 1983). Esto significaría que

puede existir un gran número de olores colo-

| niales y que los individuos poseerían gran ca-

| pacidad para identificarlos.

Entre miembros de diferentes colonias se

[ manifiesta una hostilidad, cuya intensidad

| puede variar de acuerdo a la especie. Wilson

| (citado por Isingrini 8 Lenoir, 1986), distin-

| gue dos situaciones en el reconocimiento en-

| tre individuos:

a) La intrusa luego de ser inspeccionada, es

atacada y rechazada fuera del nido o

muerta.

b) O bien, provoca una respuesta que puede

ser:

1) Abierta aceptación pero discriminación

'Financiado por FONDECYT, Proyecto: 90-1030.

“Laboratorio de Zoología, Fac. Ciencias Veterinarias y

Pecuarias, Universidad de Chile, Casilla 2-Correo 15, San-

tiago-Chile.

(Recibido: 14 de marzo de 1991. Aceptado: 21 de

agosto de 1991.)

en el ofrecimiento de alimentos hasta

que adquiere el olor propio de la colonia.

11) Aceptación, previa investigación minu-

ciosa por parte de las integrantes de la

colonia. Esta aceptación es progresiva.

Es así como una sociedad de insectos se la

considera hermética cuando los intrusos de

otra sociedad homoespecífica son agredidos

violentamente y a menudo sacrificados

(Errard et al., 1990).

Se pueden considerar una serie de factores

que estarían influyendo en el grado de herme-

tismo de una sociedad: número de reinas den-

tro de una colonia (colonia monogyna o poli-

gyna), edad de la intrusa, distancia geográfica

entre los nidos, remoción del nido, entre

otras.

La diferenciación entre individuos de dife-

rentes colonias de la misma especie está basa-

da en estímulos olfatorios que actúan como

una marca del individuo y de la cual partici-

pan todos los integrantes de la misma colonia

y, es variable entre nidos. Por lo tanto, cada

miembro de la sociedad debe poseer “cri-

terios” de reconocimiento que codifique las

marcas caracterizantes de su nido (Jaisson,

1985).

De acuerdo a lo expuesto, podemos con-

cluir que el grado de hermetismo de una socie-

dad de insectos es un tema interesante de

abordar. El presente trabajo propone estudiar

este aspecto en Camponotus morosus Smith,

1858, especie en la que se han realizado algu-

nos trabajos que abordan aspectos biológicos

30 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

de la especie en su ambiente natural (Ipinza,

1985; Ipinza et al., 1986; Covarrubias el al.,

1987: Ipinza et al., 1990).

El objetivo del presente trabajo será verift-

car que el “olor social” juega un rol en el reco-

nocimiento y grado de hermetismo entre colo-

nias de la especie chilena Camponotus morosus

Smith, 1858.

MATERIAL Y MÉTODO

Se recolectaron obreras de tres sociedades de

Camponotus morosus con sus huevos. Cada una

de ellas fue instalada en el laboratorio en su

respectivo nido artificial. Éstos estructural-

mente constan de un área de residencia (nido)

de 9x9X9 cm; un dispositivo como fuente de

humedad para el nido, de las mismas dimen-

siones y un área de exploración o forrajeo de

35x20Xx10 cm (Fresneau, 1980).

Uno de los nidos fue denominado como

Residentes (*R”) y los otros dos como Intrusas

l e Intrusas 2 (“11” e “*12”). El nido Residente

se dividió en dos grupos, a fin de que uno de

ellos constituyera el grupo de control (nido

“Rc”:

En el nido “R” se instaló un sustrato constl-

tuido por dos capas de papel para cromato-

grafía Whathman N” 1, el que fue retirado al

término de 21 días para obtener un extracto

acuoso. Para ello, se cortó finamente el papel

Whathman NC 1 y se introdujo en un recipien-

te con 15 cc de suero fisiológico (Fresneau,

1980).

La dieta consistió en pulpa de manzana

mezclada con miel (Dejean, 1986), además,

como fuente proteica, trozos de pollo crudo.

La temperatura ambiental se mantuvo en

20 += 2%C y una humedad relativa de 45 a50%.

Las 12 horas luz se proveyeron con tubos fluo-

rescentes y difusores blancos (Cosen € Tous-

saint, 1985).

Se realizaron experiencias de transferen-

cias y reintroducción que constaron de cuatro

tratamientos cada una:

— Olor propio

— Baño en Butanol

— Baño en extracto acuoso de la colonia Resi-

dentes (“R”)

— Baño en Butanol + extracto acuoso de la

colonia Residentes (“R”).

Así las hormigas de cada nido de Intrusas

(“I,” e “L>”), sometidas a estos tratamientos,

conformaron el Grupo 1 y Grupo 2, respecti-

vamente.

1. Experiencia de transferencia: Se tomaron

diez hormigas de cada nido por tratamien-

to, las que previa marcación (según técnica

descrita por Fresneau € Charpin (1977),

modificada) fueron introducidas indivi-

dualmente en el nido “R”. Se observó las

reacciones de las hormigas residentes du-

rante dos minutos por ensayo.

2. Experiencia de reintroducción: Consistió

en retornar a la “intrusa” a su nido de ori-

gen (“I;” o “I>”) inmediatamente después

de los dos minutos de permanencia en el

nido “R”. Se deseaba constatar si en la rein-

troducción de la hormiga, ésta era aceptada

por sus compañeras, o bien, atacada como

una desconocida en su grupo de origen.

Se hizo un seguimiento del tiempo (en segun-

dos) de latencia de presentación de las unida-

des conductuales siguientes: Exploración An-

tenal (EA), Abertura Mandibular (AM), Aper-

collamiento (A), Flexión de Abdomen (FA),

Simulacro de Picadura (SP), Movimientos

Bruscos de Retroceso (MBR), Lucha (L),

Transporte de la Intrusa (1), Muerte de la

Intrusa (M). (Parmigiani 8 Le Moli, 1987;

Fresnau, 1980).

Se definió tiempo de latencia de presenta-

ción de las unidades conductuales descritas, al

intervalo que transcurre a partir de la intro-

ducción de la hormiga, hasta la ocurrencia de

las unidades.

Los ensayos se realizaron entre las 10:00 y

12:00 y entre las 15:00 y 17:00 horas, que

corresponden a los períodos de máxima activi-

dad de la especie en su ambiente natural (Ipin-

za et al., 1988).

Con los resultados se realizó un análisis es-

tadístico de la distribución de frecuencia de los

eventos observados para cada tratamiento en

la experiencia de transferencia y reintroduc-

ción, respectivamente; descripción del tiempo

(segundos) de latencia de presentación de ca-

da unidad conductual, mediante el promedio

(X) y desviación típica (s); prueba de Wilcoxon

para verificar diferencias significativas en el

tiempo de latencia de presentación de la con-

ducta Exploración Antenal conjuntamente

Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus Sl

A AA A A A NÓ NS A e a e MA A EEE DOS

con Abertura Mandibular (EA+AM) entre

transferencias y reintroducción, para cada

tratamiento; presentación ordinal de eventos

durante el tiempo de observación y, por últi-

mo, un análisis de var'anza de la variable tiem-

po de latencia de presentación de la conducta

Exploración Antenal conjuntamente con

Abertura Mandibular (EA+AM), en la trans-

¡| ferencia.

RESULTADOS

Es importante destacar que C. morosus, una

especie de vida silvestre, al parecer se adapta

satisfactoriamente al régimen de vida en cautl-

verio, con alta probabilidad de ser mantenidas

en nidos artificiales durante un largo período,

posibilitando estudios a través del tiempo.

Se observa (Tabla 1) que la mayor ocurren-

cia de unidades conductuales se presenta en el

tratamiento Olor Propio. Donde en ambos

grupos se presentan con mayor frecuencia

Apercollamiento (A) y Lucha (L) respecto de

los demás tratamientos.

Al analizar la distribución de frecuencia de

unidades conductuales observadas en la trans-

ferencia, se ve que Exploración Antenal

conjuntamente con Abertura Mandibular

(EA+AM) se presentan en las 80 observacio-

nes realizadas. Le sigue la conducta de Aper-

collamiento (A) con 41 observaciones y Lucha

(L) con 31 observaciones. La unidad conduc-

tual que se observó con menor frecuencia fue

Transporte (1), con sólo 3 ocurrencias.

Se desprende de la observación de los resul-

tados obtenidos en la reintroducción (Tabla

2), que la conducta que se presentó con mayor

frecuencia por parte de las compañeras de

nido, fue Exploración Antenal conjuntamente

con Abertura Mandibular (EA+AM), seguido

por las conductas Movimientos Bruscos de Re-

troceso (MBR) y Exploración Antenal conjun-

tamente con Flexión de Abdomen (EA+FA)

con similar frecuencia de observación. La con-

ducta menos frecuente fue Apercollamiento

(A), con una observación; pudiéndose pensar

que su presentación es accidental.

Al comparar las Tablas 1 y 2, se observa que

en la experiencia de transferencia se presenta

un mayor número de unidades conductuales

realizadas por las hormigas, que en la expe-

TABLA 1

NÚMERO DE CAMPONOTUS MOROSUS QUE PRESENTARON DISTINTAS UNIDADES CONDUCTUALES EN

LOS TRATAMIENTOS DURANTE LA TRANSFERENCIA

TRATAMIENTO UNIDAD CONDUCTUAL

GRUPO 1 EA+AM MBR AM+SP EA+FA A L T M

Olor Propio 10 — 1 — 9 8 =

Butanol 10 pan 4 zo 5 6 A l

Extracto Acuoso 10 3) — 5 2 — —

Butanol + Extracto 10 15) =— 2 2 — 2

Acuoso

PROPORCIÓN 40/40 2/40 13/40 0/40 21/40 18/40 0/40 7/40

GRUPO 2

Olor propio 10 2 — — 8 9 — 2

Butanol 10 1 6 = 3 3 3 ES

Extracto Acuoso 10 l l — 4 AE 4 Ea

Butanol + Extracto 10 3) 1 = 5 l = pa

Acuoso

PROPORCIÓN 40/40 7/40 8/40 0/40 20/40 13/40 3/40 2/40

EA = Exploración Antenal A = Apercollamiento

AM = Abertura Mandibular L = Lucha

MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso 0 = Transporte

SB = Simulacro de Picadura M = Muerte

FA Flexión de Abdomen

32 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

TABLA 2

NÚMERO DE CAMPONOTUS MOROSUS QUE PRESENTARON DISTINTAS UNIDADES CONDUCTUALES EN |

LOS TRATAMIENTOS DURANTE LA REINTRODUCCIÓN

TRATAMIENTO UNIDAD CONDUCTUAL

GRUPO 1 EA+AM MBR AM+SP EA+FA A JE Tí M

Olor Propio 5 = — — — — = _

Butanol 9 Eta > 3 es 7 BA per,

Extracto Acuoso 10 ES = 3 = = 3 pe

Butanol + Extracto 8 4 = == l — E EE

Acuoso

PROPORCIÓN 32/40 4/40 0/40 6/40 1/40 0/40 0/40 0/40

GRUPO 2

Olor propio 8 — = — = = == dE

Butanol 9 in +14 an 2 pa ¡dla cda

Extracto Acuoso 10 —= — ERA = Y ia poe

Butanol + Extracto 10 4 AER 3 e pes Hey Ber

Acuoso

PROPORCIÓN 37/40 4/40 0/40 3/40 0/40 0/40 0/40 0/40

EA = Exploración Antenal A = Apercollamiento

AM = Abertura Mandibular IL = Lucha

MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso T = Transporte

SP = Simulacro de Picadura M = Muerte

FA = Flexión de Abdomen

riencia de reintroducción. Las conductas Lu-

cha (L), Muerte de la intrusa (M), Transporte

de la intrusa (T) y Abertura Mandibular

conjuntamente con Simulacro de Picadura

(AM+SP) no se observan en las hormigas

compañeras de nido de la “intrusa” frente a la

reintroducción de ésta a su nido de origen.

Por el contrario, Exploración Antenal conjun-

tamente con Flexión del abdomen (EA+FA)

no se observa en las experiencias de transfe-

rencias aun cuando su ocurrencia en las expe-

riencias de reintroducción es baja.

Las unidades conductuales Exploración

Antenal conjuntamente con Abertura Mandi-

bular (EA+AM), son las únicas que se presen-

taron tanto en las experiencias de transferen-

cia como de reintroducción.

Como se desprende del análisis del tiempo

de latencia de presentación de las unidades

conductuales (Tablas 3 al 6), Exploración An-

tenal conjuntamente con Abertura Mandibu-

lar (EA+AM) son las únicas conductas que se

presentan tanto en las experiencias de transfe-

rencias como en las de reintroducción.

Al analizar la media (X), desviación típica

(s) y rango de estas unidades conductuales

para cada tratamiento, tanto en la transferen-

cia como en la reintroducción de la “intrusa”,

se ve que hay una gran variación en la presen-

tación del tiempo de latencia. Sin embargo,

resulta destacable el que en el tratamiento

Olor Propio, los resultados para estas unida-

des conductuales presentan una similitud re-

lativa en ambos grupos, no así en los demás

tratamientos, donde la disparidad es mani-

fiesta.

Al realizar una comparación del tiempo de

latencia de presentación de Exploración Ante-

nal conjuntamente con Abertura Mandibular

(EA+ AM) entre tratamientos, tanto para

transferencia como para reintroducción, no se

encontraron diferencias significativas según la

Prueba de Wilcoxon (Steel 8 Torrie, 1960).

En la distribución de frecuencias de la pre-

sentación ordinal de las unidades conductua-

les durante el tiempo de observación (Tablas 7

al 10), apreciamos que siempre las primeras

en presentarse, tanto en la transferencia como

Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus 33

TABLA 3

DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y

REINTRODUCCION DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO OLOR PROPIO

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

o Unidad X s . Rango E Xx s Rango

P Conduc. (sg) (sg) - (sg) (sg) (sg) (sg)

EA+AM 14 19,5 2a 42 10 39,4 35,6 8 a 89 5

1 MBR — — — A — = — *

A 28,3 23,9 l10a 87 9 = = = *

L 60,7 38,6 IDEAS 8 — = = *

EA+AM 13,6 11,9 Sia 45 10 47,6 36,4 l a 88 8

2 MBR 33 36,7 Ta 59 2 = = = *

A 38 24,6 l0a 75 8 = = a *

L 43,3 24,8 Ta 89 9 — = == *

* no se presentó

EA = Exploración Antenal

AM = Abertura Mandibular

MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso

A = Apercollamiento

L = Lucha

5% = Media

S = Desviación Típica

n = Número de Individuos

TABLA 4

DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y

REINTRODUCCIÓN DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO BAÑO EN BUTANOL

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

Grupo Unidad E Ss Rango ed X S Rango SS

Conduc. (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) (sg)

EA+AM 8,5 5,3 22 17 10 15 9,1 DEL] 9

1 AM+SP 51,2 42,3 17a 110 4 = = to *

A 47,6 20,7 La 77 5 — — — *

16, 58 37 4a 91 6 = = = E

EA+AM 17,6 9,5 ba 34 10 17,9 14,5 5a4l 9

2 AMxSP 42,8 35,6 6a 95 6 = — a

A 36,7 AD l9a 68 3 — — — E

E 56,3 14,6 AZ 3 = — — *

* no se presentó

EA = Exploración Antenal

AM = Abertura Mandibular

SP = Simulacro de Picadura

A = Apercollamiento

L = Lucha

X = Media

S = Desviación Típica

n = Número de Individuos

34 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

TABLA 5

DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y

REINTRODUCCIÓN DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO BAÑO EN EXTRACTO ACUOSO

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

Grupo Unidad X s Rango A X s Rango a

Conduc. (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) (sg)

EA+AM 19,7 15,8 SADO 10 14,1 9 4 a 29 10

1 AM+SP 43,3 35,1 40a 80 2 14,7 6,1 842) 3

A 68,8 32 20a 95 5 = = E *

L 50 67,8 2a 98 2 ES peeR ea *

EA+AM 22D 26,5 VA 10 9,6 4,6 4a17 9

2 AM+SP = = = * — a Ei k

A 445 40,5 Za 95 4 = =z = *

L = za = * =— = E *

* no se presentó

EA = Exploración Antenal L = Lucha

AM = Abertura Mandibular X = Media

FA = Flexión de Abdomen S = Desviación Típica

A = Apercollamiento n = Número de Individuos

TABLA 6

DESCRIPCIÓN DEL TIEMPO (SEGUNDOS) DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES OBSERVADAS EN LA TRANSFERENCIA Y

REINTRODUCCIÓN DE CAMPONOTUS MOROSUS EN TRATAMIENTO BAÑO BUTANOL + EXTRACTO

ACUOSO

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

ES Unidad X S Rango E X S Rango e

Es Conduc. (sg) (sg) (sg) (sg) (sg) (sg)

EA+AM 15 9,4 HAIZO 10 10,6 9,3 4 a32 9

1 AM+SP 63,4 18 36a 8l 5 —= = — ES

EA+FA = —= = SS 13 5,7 9a17 2

MBR =— =— == * 29,5 35,8 4 480 4

A 20,5 12 l2a 29 2 — — = *

IL, 92,5 2201 9la 94 2 = = = *

EA+AM 16 13,5 6a 47 10 312 26,9 4a 89 10

2 AM+SP = = == * Ea pan *

EA+FA = — = * 51 26,6 23 a 716 3

MBR 50 44,1 8a 9% 3 62,5 29,2 45 a 106 4

A 57,4 30 21a 101 5 = — = *

L q do ps * MES cu el *

* no se presentó

EA = Exploración Antenal L = Lucha

AM = Abertura Mandibular = Media

02)

Simulacro de Picadura

MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso

A = Apercollamiento

Desviación Típica

Número de Individuos

503%

Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus 35

TABLA 7

DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACIÓN

(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO OLOR PROPIO

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

ño Orden de Unidad E Unidad F E

E Presentación E Conduc. ñ » Conduc. IES

Primero 10 EA+AM 10/10 5 EA+AM 5/5

1 Segundo y A SUIS — — p-

Tercero 8 L IAS = = =

Primero 10 EA+AM 9/10 8 EA+AM 8/8

2 Segundo 10 A 6/10 = = EE

Tercero 8 L 6/ 8 = = ==

EA - = Exploración Antenal A = Apercollamiento

AM = Abertura Mandibular L = Lucha

TABLA 8 :

DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL c

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACION

(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO BAÑO EN BUTANOL

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

Grupo Orden de Unidad Frecuencia n Vin elo Frecuencia

p Presentación Conduc. Conduc.

Primero 10 EA+AM 10/10 9 EA+AM 9/9

1 Segundo 10 A 5/10 = — =

Tercero 5 IL O = — =

Primero 10 EA+AM 10/10 9 EA+AM 9/9

2 Segundo 8 AM+SP ES = = —

Tercero 4 L 20 RA! — — —

Cuarto 4 Ni IA — — —

EA = Exploración Antenal A = Apercollamiento

AM = Abertura Mandibular L = Lucha

SP = Simulacro de Picadura ly = Transporte

en la reintroducción, son Exploración Ante-

nal conjuntamente con Abertura Mandibular

(EA+ AM).

Se observa en la experiencia de transferen-

cia que sólo en el tratamiento Olor Propio se

repiten en ambos grupos, en idéntico orden:

Exploración Antenal con Abertura Mandibu-

lar (EA+AM), Apercollamiento (A) y Lucha

(L); mientras que en los otros tratamientos ello

no se observa. Por otra parte, las mismas con-

ductas y en el mismo orden, se presentan en el

Grupo 1 en los distintos tratamientos, excepto

en Baño Butanol + Extracto Acuoso, donde

Apercollamiento (A) y Lucha (L) no se presen-

tan, aunque sí se observa Abertura Mandibu-

lar con Simulacro de Picadura (AM+SP), que

aparece también en el Extracto Acuoso (en

tercer lugar de presentación).

En el análisis de la experiencia de reintro-

ducción, en el tratamiento Baño Butanol +

Extracto Acuoso, para el Grupo 1, es posible

determinar más de una unidad conductual en

Rev. Chilena Ent. 19, 1991

TABLA 9

DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACIÓN

(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO BANO EN EXTRACTO ACUOSO

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

Grupo Orden de Unidad Frecuencia n Dpidaa Frecuencia

Presentación Conduc. Conduc.

Primero 10 EA+AM 10/10 10 EA+AM 10/10

l Segundo 7 A Y) Ss — ze

Tercero 4 AM+SP 2/ 4 = — =

IL, DN = => ue

Primero 10 EA+AM 9/10 9 EA+AM 9/9

2 Segundo 5 A 0) — = —

EA = Exploración Antenal SP = Simulacro de Picadura

AM = Abertura Mandibular L = Lucha

A = Apercollamiento

TABLA 10

DISTRIBUCIÓN DE FRECUENCIA DE LA PRESENTACIÓN ORDINAL

DE LAS UNIDADES CONDUCTUALES DURANTE EL TIEMPO DE OBSERVACIÓN

(2 MINUTOS) EN TRATAMIENTO BAÑO BUTANOL + EXTRACTO ACUOSO

TRANSFERENCIA REINTRODUCCIÓN

ta Orden de Unidad F . A Unidad E .

P Presentación Conduc. IA Conduc. E ado

Primero 10 EA+AM 10/10 9 EA+AM 8/ 9

1 Segundo 6 AM+SP SO 5 MBR 2) 5

EA+FA 2

Primero 10 EA+AM 10/10 10 EA+AM 10/10

2 Segundo 9 A 5/9 7 MBR AY

EA = Exploración Antenal MBR = Movimientos Bruscos de Retroceso

AM = Abertura Mandibular FA = Flexión Abdomen

SP = Simulacro de Picadura A = Apercollamiento

orden de presentación en el tiempo (Movi-

mientos Bruscos de Retroceso (MBR) y Explo-

ración Antenal acompañado de Flexión de

Abdomen (EA+FA) se presentaron en segun-

do lugar con igual frecuencia.

Siendo Exploración Antenal conjuntamen-

te con Abertura Mandibular (EA + AM) en la

experiencia de transferencia, las únicas unida-

des conductuales que por su frecuencia de

presentación son analizables estadísticamente,

no se obtuvieron, en el Análisis de Varianza,

valores significativos para F (Tabla 11).

TABLA 11

RESULTADOS DEL ANÁLISIS DE VARIANZA,

VALORES DE “F” PARA TIEMPO (SEGUNDOS)

DE LATENCIA DE PRESENTACIÓN DE

EXPLORACIÓN ANTENAL CONJUNTAMENTE

CON ABERTURA MANDIBULAR (EA+ AM), EN

LAS EXPERIENCIAS DE TRANSFERENCIA

Fuentes de Variación F Significación

Entre Tratamientos 3,01 p > 0,05

Entre Grupos 0,94 p > 0,05

Interacción

Grupo- Tratamiento 0,42 p > 0,05

Ipinza et al.: Hermetismo en sociedades de Camponotus morosus 7)

DISCUSION

En las observaciones realizadas durante las

experiencias de transferencias y reintroduc-

ción, las unidades conductuales que se presen-

tan por parte de las hormigas residentes, per-

miten determinar que Camponotus morosus es

una especie cuyas sociedades son herméticas

frente a la introducción de una obrera de otra

sociedad homoespecífica.

Estas unidades conductuales, en general,

concuerdan con las descritas en la literatura

revisada (De Vroey 8c Pasteels, 1978; Goetsch,

1983; Permigiani 8: Le Moli, 1987). Sin em-

bargo, ellas se presentan en especies de hormi-

gas más primitivas en su evolución que Campo-

notus morosus. Un ejemplo de ello es la unidad

conductual Flexión de Abdomen, comporta-

miento que no presentan otros miembros del

género Camponotus (Jaisson, comunicación

personal).

La agresiva reacción frente a la introduc-

ción de una obrera que no pertenece a la colo-

nia, demuestra una gran capacidad de los in-

dividuos para reconocerse, identificando a los

miembros de un mismo nido perfectamente.

En el presente trabajo se comprobó que este

reconocimiento se realiza en base a caracterís-

ticas olorosas que serían propias y particulares

para cada colonia.

Se observó una diferencia (no significativa)

en el tiempo de latencia de presentación de las

unidades conductuales Exploración Antenal

conjuntamente con Abertura Mandibular en-

tre los tratamientos introducción con Olor

Propio y Baño Butanol + Extracto Acuoso. A

pesar que estadísticamente no fue demostra-

do, esta diferencia entre los tratamientos que

incluyen el Baño Butanol, concordarían con lo

citado por Bonavita 8: Poveda (1970); Lenoir

$ Provost (1986); Lenoir (1987); Errard e:

Jallon (1987); Errard et al. (1989), referente a

que el olor social está compuesto por hidrocar-

buros que se encuentran en la cera cuticular

de estos insectos; donde el Butanol actuaría

como solvente de esta cera, dificultando el

reconocimiento de la “intrusa” por parte de

las “residentes”.

Se debe destacar el hecho que las obreras se

mantuvieron en el laboratorio durante cuatro

meses previo a los ensayos, sin embargo, el

“olor colonial” persistió como se verificó cuan-

do se introdujeron al nido “Residentes” hor-

migas del Grupo “Residentes control” siendo

reconocidas y aceptadas por sus compañeras.

Esta observación hace pensar que el origen

del olor social en esta especie es endógeno, ya

que si fuera exógeno (material del nido y/o

alimento) la permanencia en un ambiente ho-

mogéneo (el laboratorio) habría neutralizado

las diferencias entre los nidos y no se manifes-

tarían las reacciones de rechazo frente a la

introducción de una hormiga “intrusa”.

Otro aspecto que llamó la atención fue el

hecho que las unidades conductuales Explo-

ración Antenal y Abertura Mandibular (EA y

AM) siempre se presentaron juntas y en pri-

mer lugar. La razón de ello sería que estas

conductas son básicas en el reconocimiento

entre compañeras de nido. De hecho, como ya

se ha visto, el olor es lo que permite la identifi-

cación de los individuos y un rápido cepillado

con las antenas facilita este reconocimiento.

La abertura Mandibular sería parte inherente

a esta conducta.

Así como Exploración Antenal y Abertura

Mandibular (EA y AM) serían componentes

del repertorio de reconocimiento, Apercolla-

miento (A) y Lucha (L) lo son del repertorio de

rechazo cuando se detecta que la obrera no

pertenece al nido. Es por ello que estas unida-

des conductuales se presentan con mayor fre-

cuencia en el tratamiento de transferencia con

Olor Propio.

Finalmente, frente a los resultados obteni-

dos se crea la necesidad de realizar un estudio

específico de la naturaleza y composición del

“olor social” como un paso más para conocer

el complejo mecanismo de reconocimiento en-

tre compañeras de nido. Todo ello como parte

de un enfoque sociobiológico en el estudio de

las hormigas, específicamente de la especie

Camponotus morosus.

CONCLUSIONES

Se concluye que:

— Camponotus morosus es una especie herméti-

ca frente a hormigas homoespecíficas per-

tenecientes a otras sociedades.

— Las unidades conductuales Exploración

Antenal y Abertura Mandibular son las pri-

meras en presentarse y además lo hacen en

forma conjunta.

38 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

— Exploración Antenal conjuntamente con

Abertura Mandibular (EA+AM) serían la

conducta básica de reconocimiento, ya que

se presentaron con la mayor frecuencia en

ambas experiencias.

— Las unidades conductuales Apercollamien-

to (A), Lucha (L) y Muerte (M), son parte

del repertorio de manifestación violenta de

rechazo frente a la presencia de una hormi-

ga que no es reconocida como integrante

del nido.

—El baño en Butanol disolvería la capa de

cera cuticular y con ello las sustancias quí-

micas que componen el olor social, favore-

ciendo la aceptación de la “intrusa” en el

nido.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen el apoyo financiero

brindado por FONDECYT (Proyecto 90-1030).

Agradecemos también a la Sra. Margarita

Azólas por mecanografiar el manuscrito.

LITERATURA CITADA

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DESCRIPCIÓN DE LOS HUEVOS DE LOS FÁSMIDOS

(PHASMATODEA: PSEUDOPHASMATIDAE) DE CHILE!

ARIEL CAMOUSSEIGHT? e Isaías BUSTAMANTE

RESUMEN

Se estudian y describen comparativamente los huevos de los cuatro géneros de Phasmatodea presentes

en Chile, incluyéndose por primera vez a Paraprisopus Redtenbacher, 1906, como constitutivo de la

entomofauna regional. Se adscribe Xeropsis a la Tribu Bacunculini.

ABSTRACT

The eggs of the four genera of Phasmatodea known from Chile are studied and described

comparatively, including Paraprisopus Redtenbacher, 1906, which is recorded for the first time for the

regional entomofauna. Xeropsis is proposed as a member of the Tribe Bacunculini.

INTRODUCCIÓN

En estudios referentes a la macroestructura

coriónica de los huevos de fásmidos, se ha

establecido que la presencia combinada de dos

formaciones características de ellos, el opércu-

lo y la micropila, definirían el Orden. El

opérculo, generalmente ubicado en el polo

superior, consiste en una tapa que cierra la

salida de la ninfa, la cual debe removerla du-

rante su emergencia; puede o no poseer un

asa O capítulo, de muy diversas formas y tama-

ños. La micropila, ubicada en el costado dor-

sal, en relieve, con una porción basal que re-

cuerda a un receptáculo con su abertura diri-

gida hacia el polo superior. Esta micropila es

parte integral de la lámina micropilar que

puede o no estar claramente delimitada exte-

riormente, pero que por la cara interna del

corion se presenta como una bien delineada

zona blanca nacarada, con un pequeño orifi-

cio en su extremo posterior o basal donde se

insertarían los tubos micropilares. La lámina y

muy especialmente los canales o tubos micro-

pilares constituyen el único contacto entre el

huevo y el medio externo; se ha postulado que

'Resultado parcial del Proyecto FONDECYT 107-87.

Mus. Nac. Hist. Nat. Secc. Entomología, Casilla 787.

Santiago-Chile.

(Recibido: 28 de mayo de 1991. Aceptado: 22 de julio

de 1991.)

a través de ellos se efectuaría intercambio ga-

seoso y la fertilización; el nombre micropila

hace mención justamente a esta última fun-

ción. Sellick (1986), desde esta visión interna,

estableció dos categorías de micropilas: cerra-

das, cuando el punto de inserción de los cana-

les micropilares queda completamente rodea-

do por la lámina; y abiertas, al quedar un

espacio entre dos porciones de ella, es decir no

rodeando completamente el tubo micropilar.

Los elementos señalados han permitido di-

ferenciar muy bien los géneros. Aún más, ca-

racterísticas de la superficie coriónica: rugosi-

dades, vellosidades, etc., en su ultraestructura

permiten diferenciar taxa de nivel especie.

En el presente trabajo se describen los hue-

vos de los cuatro géneros presentes en el país,

basados en el estudio de las especies Agatheme-

ra crassa, A. elegans, A. millipunctata; Xeropsis

crassicornis; Bacunculus phyllopus, B. granullico-

lis, B. cornutus, B. blanchard: y Paraprisopus Sp.

Por otra parte, se desea confrontar lo plantea-

do por Sellick (op. cit.), en relación a la ausen-

cia de capítulo en los géneros del Suborden

Areolata lo que en parte contribuiría a susten-

tarlo, puesto que la sola presencia del área

apicalis en la cual se basa, es demasiado débil.

MATERIALES Y MÉTODOS

Los huevos se obtuvieron a través de posturas

efectuadas en el laboratorio o de material de

40 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

colección (hembras oviplenas), que fueron

hervidas en agua por algunos minutos y luego

disecadas.

Las fotografías se efectuaron en lupas

binoculares para las vistas generales y con mi-

croscopio electrónico de barrido (Deol JSM

255 11), con tratamiento previo de sombreado

con Au-Pd durante 3 minutos, en unidad de

sombreado Pelco Sputter, manteniéndose al

vacío hasta la sesión fotográfica, en la que se

utilizó película Kodak 100 asas formato 120.

En la Fig. 1 se aprecian las estructuras utili-

zadas para las descripciones, como también la

forma en que se efectuaron las mediciones.

Polo supe-

Capítulo

rior o ante- 2

S Opérculo

rior =

Angulo in-

clinación

del opér= Ll linea media

culo

Alto

Lámina micro-

Lado ventral

Lado dorsal

pilar

=43--Micropila

Polo poste-

rior o infe-

rior Ancho

Figura 1. Vista general de la cápsula del huevo o corion.

Estructuras consideradas en las descripciones (según

Clark, 1979).

RESULTADOS

Descripción de los huevos

Los huevos de Agathemera (Fig. 3), de talla Ns

6,4 mm (n = 20) tienen una relación largo/

ancho de 7:3. Lado dorsal convexo y ventral

levemente cóncavo. Superficie aparentemen-

te lisa, pero con débiles rugosidades regulares

al microscopio de barrido. Opérculo (Fig. 4),

circular y esferoidal, ubicado en el polo supe-

rior, carente de reborde opercular, con un

ángulo de inclinación de 27,5 + 0,5 grados,

con o sin un pequeño capítulo mamilar cen-

tral. Lámina micropilar (Fig. 3), lanceolada

que cubre prácticament todo su largo, sin lle-

gar a contactarse con el opérculo; perímetro

delineado por una pronunciada cresta. Micro-

pila (Fig. 5), como labio con sus comisuras ha-

cia arriba, desde su parte central se continúa

hacia el polo inferior por una carina. La línea

media claramente delineada a todo lo largo de

la lámina micropilar. Lámina micropilar inter-

na, abierta (Fig. 2a).

Figura 2. Láminas micropilares, vista interna. a. Agatheme-

ra, b. Paraprisopus, c. Xeropsis, d. Bacunculus.

En el género Paraprisopus los huevos tienen

una talla X = 3,5 mm (n = 4) y una relación

largo/ancho de 2:1. Lado dorsal suavemente

convexo y ventral aplanado con banda adhesi-

va extendida a todo su largo, polo superior

aplanado (Fig. 6). Opérculo ovoidal liso, ubi-

cado en el lado dorsal (Fig. 7) y cubriendo

aproximadamente el tercio superior, con re-

borde opercular y sin capítulo. Lámina micro-

pilar casi imperceptible, de reducido tamaño.

Micropila (Fig. 8) ubicada en la mitad inferior

del lado dorsal, formada por dos estructuras:

la basal como labio con sus extremos dirigidos

hacia arriba y la superior en forma de lengúe-

ta, proyectada en la concavidad central dejada

por la estructura inferior. Lámina micropilar

interna, cerrada (Fig. 2b). pa

En Xeropsis la talla de los huevos es X = 4

mm (n = 2), proporción largo/ancho de 7:4, el

corion presenta una superficie rugosa y cada

una de las crestas así formadas están orladas

de una hilera de densas y largas cerdas

(Fig. 9), lado dorsal notablemente curvo, lado

ventral aproximadamente recto. Opérculo

(Fig. 10), circular con una hilera de cerdas en

su periferia, se ubica en el polo superior, sin

| Camousseight y Bustamante: Huevos de Pseudophasmatidae de Chile 41

OOO at A E e o

Figuras 3-15: 3. Huevo de Agathemera, costado dorsal con lámina micropilar. 4. Id. ant., opérculo. 5. Id. ant., micropila

(45x). 6. Huevo de Paraprisopus, vista lateral izquierda. 7. Id. ant., vista dorsal, opérculo y lámina micropilar. 8. Id. and.,

| micropila (45x). 9. Huevo de Xeropsis, vista lateral izquierda. 10. Id. ant., opérculo con capítulo (45x). 11. ant., micropila

(100x). 12. Huevo de Bacunculus, vista ventral. 13. Id. ant., prolongaciones digitiformes sobre el corion (70x). 14. Id. ant.,

opérculo con capítulo (100x). 15. Id. ant., micropila (150x).

42 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

reborde opercular, con capítulo en forma de

corona de paredes rugosas con profundas de-

presiones. Lámina micropilar fuertemente

delimitada por un grueso pliegue, ubicada en

el extremo dorsal inferior (Fig. 11), en su por-

ción más inferior se ubica la micropila, como

una profunda depresión, por sobre ella una

estructura piramidal cuyo ápice se dirige hacia

el extremo basal; el conjunto de la lámina y

micropila es glabro, destacándose del resto de

la superficie. Lámina micropilar interna, ce-

rrada (Fig. 2c).

Los huevos del género Bacunculus (Fig. 12)

tienen una talla X = 3,3 mm (n = 30), propor-

ción largo/ancho de 9:5, de lados suavemente

convexos, toda la superficie rugosa con espa-

cios más bien amplios distribuidos con una

cierta regularidad, en los que se desarrollan

pequeñas elevaciones digitiformes (Fig. 13).

Superficie glabra a excepción del borde de

inserción del opérculo que tiene una hilera de

largas cerdas. Opérculo (Fig. 14), circular ubi-

cado en el polo superior, sin inclinación, con

capítulo circular elevado, en forma de empali-

zada continua que deja en su interior un espa-

cio libre y luego una estructura tri O tetra

lobulada a modo de torreón central. Tanto en

el espacio entre el borde del opérculo y el

capítulo y en el espacio entre la empalizada y la

estructura central se presentan microdigita-

ciones. Lámina micropilar ovoidal (Fig. 15),

semejante a Xeropsis, pero con un borde menos

pronunciado, compuesto de pequeñas micro-

digitaciones, ocupando la porción más distal

del costado dorsal. Micropila excavada en la

porción más distal de la lámina, por sobre ella

una carena media que termina en una punta

libre proyectada distalmente, el borde supe-

rior de dicha carena es irregular. El conjunto

se destaca nítidamente sobre la superficie co-

riónica. Lámina micropilar interna, cerrada

(Fig. 2d).

DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES

Los cuatro géneros estudiados corresponden

a la totalidad de géneros de fásmidos conoci-

dos de Chile; las modalidades de postura de

sus especies representan los tres tipos consta-

tados en este Orden. En Agathemera, las hem-

bras introducen el extremo de su abdomen en

la tierra blanda, operación que repiten nume-

rosas veces; en Paraprisopus, los huevos deben

ser pegados sobre algún sustrato particular,

dadas las características peculiares de una es- |

tructura adherente en el costado ventral, no

hay observaciones a este respecto. Llama la

atención la semejanza existente entre Prisopus

y Paraprisopus tanto en lo relacionado a la for-

ma de oviponer como en el hecho de que son

los únicos géneros en que el opérculo se en-

cuentra ubicado sobre el costado dorsal y en

línea con la lámina micropilar. Es probable

que con un estudio más acabado a este respec-

to Paraprisopus se estableciera como sinónimo |

de Prisopus. En Xeropsis y Bacunculus las hem-

bras efectúan sus posturas dejando caer los

huevos desde lo alto de las ramas donde se |

posan y se alimentan. |

En un trabajo anterior (Camousseight,

1988) sobre especies del género Bacunculus, se

analizó el género en el cual se reunieron los

“palotes” de la región chileno-patagónica,

adjuntándose antecedentes principalmente

acerca de la morfología de las genitalias feme-

ninas y masculinas. De este estudio se destaca

la ordenación que adoptan las valvas que for-

man la genitalia de la hembra y, muy especial-

mente, la presencia de foliaciones basales, las

cuales son visibles exteriormente a ambos cos-

tados del extremo posterior del abdomen, los

machos por su parte, tienen su genitalia orga-

nizada básicamente sobre cinco lóbulos mem- 1

branosos y una estructura quitinosa central,

destacándose la estrecha relación establecida 1

por dos de los lóbulos a través de una conspi- |

cua zona de anclaje. Con anterioridad (Ca-

mousseight, 1986) se estudió el género Xerop- |

sis, monoespecífico y que representa también |

a los “palotes” por su forma de rama o peque- Í|

ño palo, estableciéndose la presencia de los:

elementos básicos que comentamos (valvas, f

foliaciones basales, zona de anclaje) pero con |

una ordenación peculiar para el género. En ;

esa oportunidad se cuestionó la inclusión del |

género en la Tribu Xerosomatini, porque tan- [|

to sus características morfológicas como su ||

distribución geográfica (38%45' - 41945" lat.S)

no tienen relación con los otros 11 géneros

que la constituyen (Bradley £ Galil, 1977).

Respecto a este problema, los antecedentes

aportados por el estudio comparado de los

huevos relacionan a Xeropsis con Bacunculus

por la presencia de conspicuos capítulos, su-

Camousseight y Bustamante: Huevos de Pseudophasmatidae de Chile 43

perficies coriónicas rugosas, láminas micropi-

¡lares internas cerradas. Estos caracteres junto

a aquellos de la genitalia, recién comentados,

nos permiten, aceptando que el género Xerop-

sis está mal ubicado en la Tribu Xerosomatini,

sacarlo de allí y ubicarlo en la Tribu Bacuncu-

lini, creada sólo para el género Bacunculus. Es

sin duda, el parentesco del género Xeropsis con

Bacunculus mucho más estrecho que con cual-

quier otro que se conoce. La Tribu Bacunculi-

ni estaría entonces integrada por estos dos

géneros, característicos de una fauna del área

' comprendida al sur del paralelo 302 lat.S. y la

ladera occidental de la cordillera de los Andes.

Respecto de lo que Sellick (1986) planteara

en relación a la ausencia de capítulo en los

huevos de la especie del Suborden Areolata,

como una posible característica común a todas

ellas, se puede afirmar que ello es falso, por-

que a lo menos las especies de los géneros

Xeropsis y Bacunculus tienen conspicuos Ca-

pítulos y tienen además bien desarrollados

triángulos en los extremos distales de sus ti-

bias, por lo cual son entonces claros compo-

nentes de este Suborden.

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Rev. Chilena Ent.

1991. 79: 45-50

OBSERVACIONES EN LA NIDIFICACIÓN DE PACHODYNERUS PERUENSIS

(SAUSSURE) (HYMENOPTERA: VESPIDAE: EUMENINAE)'

ELIZABETH CHIAPPA” y MACARENA Rojas?

RESUMEN

Se entrega la descripción de sitios de nidificación de Pachodynerus peruensis, en el desierto de Atacama

(I Región, Chile). Se detallan las características de los nidos y del número de presas que presentan. Se

describen las formas inmaduras.

ABSTRACT

Descriptions of the nesting areas of P. peruensis in the Atacama desert of Chile are provided;

characteristics of the nests and the number of preys are presented. The inmadure forms are also

described.

INTRODUCCIÓN

En este trabajo se presentan las observaciones

sobre nidificación y estados inmaduros de Pa-

chodynerus peruensis (Saussure), realizadas en la

Pampa del Tamarugal, en la 1 Región de Chi-

le; el lugar está situado en un salar, en pleno

desierto de Atacama, una de las zonas más

secas y áridas del mundo. Esta especie es uno

de los insectos que visita las inflorescencias de

Prosopis, en busca de larvas de lepidópteros

para abastecer los nidos y alimentar sus crías.

Hay varias razones por las cuales este estu-

dio fue realizado:

— debido a que esta especie puede sobrevivir

[en condiciones de aridez muy extremas, sl-

tuación especialmente llamativa, conside-

rando que la mayor parte de los Eumeni-

nae, fabrican nidos de barro y necesitan

agua para construirlos;

— porque esta subfamilia, presenta una gran

plasticidad en la conducta de nidificación,

lo que hace importante conocer la biología

de cada especie (Evans £e Matthews, 1974);

"Financiado por Proyecto Fondecyt 0490-90 y Direc-

ción General de Investigaciones de la Universidad Católi-

ca de Valparaíso.

“Laboratorio de Zoología, Universidad Católica de

Valparaíso, Casilla 4059, Valparaíso - Chile.

(Recibido: 25 de junio de 1991. Aceptado: 31 de julio

de 1991.)

— porque la clasificación genérica es poco es-

table (Carpenter £e Cumming, 1985) y po-

dría ser aclarada por el conocimiento de

nuevos elementos a partir del análisis de los

estados inmaduros y la nidificación;

— por la escasa investigación sobre el compor-

tamiento y la biología de estas especies.

En este trabajo se sigue la clasificación de

los Vespoidea propuesta por Carpenter

(1982), quien presenta en su estudio, un análi-

sis cladístico de caracteres y una hipótesis filo-

genética, para establecer los taxa de esa super-

familia.

MATERIALES Y MÉTODOS

Se estudiaron dos zonas de nidificación en la

Reserva Forestal “El Refresco”, ubicada en el

Salar de Pintados (20916" lat. S-69%48" long.

W). Cada una de las áreas presentaba caracte-

rísticas muy distintas entre sí, una de ellas en

suelo muy duro, difícil de excavar y sin vegeta-

ción, que se llamó zona A. Situada a una dis-

tancia aproximada de 1 km, estaba la segunda

área de nidificación, construida bajo un Proso-

pis tamarugo, en suelo relativamente blando y

arenoso, que se denominó zona B.

Además, de material apropiado para exca-

var, se utilizó agua para ablandar el terreno en

los lugares más duros y complicados para tra-

46 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

bajar, donde la capa de sal medía hasta 23 cm

de profundidad; la consistencia en esta zona,

cuando estaba seca, era semejante a la de un

bloque de ladrillo.

Se excavaron 16 nidos construidos en el

salar, de los cuales se obtuvieron los siguientes

datos:

— estructura general del nido;

—largo y diámetro de la chimenea, del túnel

de entrada y las celdillas;

— número de celdillas por nido;

— número y especies de presas.

Además, se estudiaron los estados inmadu-

ros y se registraron los parásitos que se encon-

traron en el área y en los nidos. Este material

se fijó en una solución de formalina, ácido

acético y glicerina, para su posterior estudio

en laboratorio.

Las observaciones, de cinco días de dura-

ción cada una, se realizaron en febrero de

1989, julio y octubre de 1990 y enero de 1991.

RESULTADOS

De acuerdo con lo observado, se encontraron

adultos entre los meses de julio a febrero, con

mayor abundancia en los meses de septiembre

y octubre.

Nidos. La densidad de los nidos alcanza a

13 por m?, en las zonas más densas (Área B).

Para realizar la tarea de excavación, las avispas

no sólo utilizan sus mandíbulas, sino que tam-

bién humedecen el suelo para ablandarlo, con

néctar que regurgitan; esta estrategia es espe-

cialmente eficiente en el Salar, lo que se pudo

comprobar posteriormente utilizando el mis-

mo sistema en la excavación de nidos.

Externamente los nidos poseen una chime-

nea cilíndrica, curvada horizontalmente; de

más de 30 chimeneas observadas, se midieron

4, que presentaban un X = 1,47 cm de altura

máxima; su entrada, de diámetro muy varla-

ble (rango = 5,40-6,28 mm), es ovalada dirigi-

da hacia abajo y con su abertura paralela al

suelo; el tubo tiene un diámetro X = 5,8 mm,

más corto en la parte horizontal que en la

vertical, con un ángulo variable entre ellas

(Fig. 1). Algunas se encuentran construidas

horizontalmente sobre el suelo, pero conser-

vando la misma forma que las verticales.

Figura 1. Vista lateral de la chimenea del nido de P.

peruensis. La abertura, probablemente, impide la entrada

de arena arrastrada por el viento.

Para confeccionarlas, las avispas, pegan

material tomado del suelo, cementado con al-

guna sustancia producida por ellas; la cons-

trucción no es una capa compacta ya que que-

dan poros fácilmente visibles, lo que las hace

bastante frágiles. En la parte externa, se pue-

de notar una cierta simetría en la disposición

de las partículas presentando, a veces, marcas

externas circulares; la pared interna es más

lisa.

El nido se continúa internamente con un

túnel casi vertical (Fig. 2A), de X = 10,57 cm

de largo (rango = 7-21 cm; n = 7), con un

diámetro bastante constante de X = 6 mm

(rango = 5,02-6,8 mm; n = 8), que puede

presentar las siguientes variantes:

— más angosto en los primeros 3 cm,

— de mayor diámetro cuando termina y a la

entrada de cada celdilla.

Existen 2-7 celdillas en la parte vertical del

túnel, construidas en distintas direcciones, ge-

neralmente horizontales o hasta con 45% de

inclinación. Al final de su recorrido, el túnel

central, da origen a un racimo de celdas, en

número y tamaño variables (Tabla 1).

Chiappa y Rojas: Nidificación de Pachodynerus peruensis 47

TABLA 1

MEDIDAS DE CELDILLAS

Largo Ancho Abertura Abertura

sin uso opérculo

' Máximo 18,82 8,56 4,72 5,80

' Mínimo 10,56 4,88 3,30 4,80

| Promedio 13,63 6,42 4,22 5,33

| Varianza 3,57 0,97 0,19 0,16

| Desv. Est. 1,89 0,99 0,43 0,39

Las celdillas tienen forma de barril, redon-

' deadas en la base y truncadas en el ápice (Fig.

'2B). Están constituidas por dos capas:

— una externa, confeccionada con granos de

arena y cementada con sustancias produci-

das por la avispa, es más pulida interna que

externamente y está recubierta por una fi-

na película brillante, suave, flexible e im-

permeable;

— la otra capa, tejida por la larva, es de color

blanco amarillento, delgada y transparente,

no alcanza hasta la entrada de las celdillas y

recubre las fecas depositadas en el fondo.

En la parte superior, se encuentra el cierre

en forma de un opérculo redondo, cóncavo

por encina y convexo por dentro (Fig. 2C), a

veces con una protuberancia interna central;

está hecho de barro, pero más compacto y

¡duro que las paredes de la celdilla. La larva,

también teje un opérculo circular por debajo

del anterior, hecho del mismo material con

que recubre las paredes.

Las celdillas usadas se diferencian fácil-

Figura 2. A: estructura del nido, se observa la chimenea

con abertura paralela al sustrato, escasas celdillas a lo

largo del túnel y un racimo terminal. B: corte de una

celdilla, mostrando la disposición de las fecas en el fondo.

C: variación en la estructura del opérculo de las celdillas,

el esquema superior muestra la faz interna recta, mientras

que el inferior presenta protuberancia media central.

mente, ya que el orificio que dejan los adultos

al emerger es de menor tamaño que el orificio

original (Tabla 1).

Contenido de las celdillas. La avispa trans-

porta una gran cantidad de larvas de lepidóp-

teros para abastecer el nido; se encontraron

hasta 106 larvas en una sola celdilla (Tabla 2).

Las presas corresponden a Ithome sp (Walshii-

dae), Leptotes trigemmatus (Lycaenidae) y Tep-

hrinopsis sp (Geometridae). El aprovisiona-

miento es de tipo masivo, pues una vez llenada

la celdilla, la avispa la cierra con un opérculo

definitivo. Las presas son solamente mordidas

durante el transporte, presentando gran mo-

vimiento dentro de las celdas, por lo que de-

ben ser consumidas rápidamente, en caso con-

trario, algunas pasan a estado de pupa y ya no

son consumidas por la larva.

TABLA 2

NÚMERO DE PRESAS POR CELDILLA

Larvas

N? celdillas Pupas Ithome Leptotes Tephrinopsis

1 106

2 5

3 8

4 2 10

5 11 l

6 13 84

Y 32 19 ]

8 4 25 8

9 86

n 19 367 27 2)

Promedio 6,33 40,78 13,50 1,00

Porcentaje 4,58 88,43 6,51 0,48

En el fondo de las celdillas ya usadas, se

observaron las fecas de la larva, en número de

21-25 (n = 5), con forma de pequeños granitos

casi esféricos, algo aplastados. Entre ellas, se

encontraron restos de los lepidópteros, princi-

palmente las partes más esclerosadas de la ca-

beza y además, algunas mudas del himenóp-

tero.

Parásitos. En la zona de nidificación B, que

presentaba mayor actividad, se observó una

gran cantidad de parásitos volando, pertene-

cientes a la familia Bombyliidae, a los que se

vio lanzando huevos a los nidos. Además se

encontraron exuvias, de los mismos, atascadas

48 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

en la entrada de las chimeneas, sin ningún

daño para estas últimas. Se encontraron 2 lar-

vas del parásito, cada una dentro de una cel-

dilla.

Excepcionalmente se encontraron taquíni-

dos, posiblemente llevados por la avispa en

una larva de lepidóptero que estaba parasi-

tada.

ESTADOS INMADUROS

Huevo. En cada celdilla se encontró un solo

huevo: de color blanco amarillento, unido a la

parte inferior de la pared lateral de la celdilla,

por medio de un fino pedúnculo de 1 mm de

largo, lo que también ocurre en algunas espe-

cies de Euodynerus (Iwata, 1976); de 3 mm de

longitud, forma cilíndrica, aunque ligeramen-

te dilatado en el extremo fijo, alcanzando

0,94-1,0 mm en su ancho máximo (X = 0,97

mm; n = 2).

Larva postdefecante

Cuerpo cilíndrico, más cónico anterior que

posteriormente, de color blanco amarillento

(largo X = 8,99 mm; varianza = 0,975 mm;

ancho = 3,83 mm; varianza = 0,236; n = 4).

Segmento terminal algo redondeado, abertu-

ra anal transversal en la mitad del último seg-

mento. Tubérculos pleurales desarrollados,

dorsalmente una elevación transversal poste-

rior en cada segmento, excepto en el último.

Espiráculos no sobresalientes; peritrema pre-

sente, poco desarrollado; atrio casi esférico,

con espinas largas distribuidas simétricamen-

te, dando, externamente, aspecto de malla re-

ticulada; área de unión con el subatrio con

corona de espinas cortas, gruesas y más anchas

que las del atrio, subatrio ovoidal con espinas

más cortas que las anteriores, repartidas irre-

gularmente. Cabeza pequeña, medida desde

el borde inferior del labro al vértex, aproxi-

madamente 1,56 mm de alto (rango = 1,32-

1,66 mm; n = 10); ancho máximo = 1,66 mm

(rango = 1,6-1,7 mm; n = 4); bandas parieta-

les sobrepasando los alvéolos antenales, sin

alcanzar la altura del borde superior del clí-

peo, divergentes y levemente esclerosadas; su-

tura coronal larga, poco marcada; sutura epis-

tomal presente, ligeramente convexa; alvéolos

antenales circulares, poco prominentes y algo

esclerosados; clípeo cuadrangular, más ancho

que largo (3:2), tercio distal con pilosidad;

labro bilobulado y estriado en su extremo dis-

tal; epifaringe con borde prominente, leve-

mente estriado y esclerosado; hipofaringe con

pequeñas espinas duras en toda su superficie;

mandíbulas esclerosadas, triangulares, con 3

dientes, el central sobresaliente al igual que el

inferior, que es ligeramente curvo en la parte

interna, el superior más corto que los anterio-

res; cara interna con depresión central reco-

rrida por el borde interno del diente medio, la

externa formada por el diente medio que es

muy protuberante; maxila con gálea cónica,

pigmentada, de ápice truncado con 4-5 espi-

nas en la superficie; palpos maxilares cilíndri-

cos, con proyección ligeramente curva dirigi-

da hacia la parte interna, sin pigmentación;

labio con abertura salival transversal, ancha,

esclerosada, rugosa, rodeada de pilosidad;

palpos labiales, cilíndricos, con espinas en el

ápice y corona interna de dientes pequeños en

el tercio superior (Fig. 3).

Figura 3. Cabeza, a: vista frontal con mandíbulas abiertas,

para mostrar labio y maxilas; b: vista lateral; c: palpo

labial; d: gálea; e: palpo maxilar; f: mandíbula, en vista

dorsal y ventral; g: vista lateral de la larva; h: espiráculo.

Chiappa y Rojas: Nidificación de Pachodynerus peruensis 49

culos sobre la superficie corporal ni en las

| patas; presenta espinas gruesas en el tegu-

l mento abdominal, más desarrolladas en el

borde distal; las antenas descansan en posi-

¡ ción ventral, dirigidas hacia atrás y paralelas a

¡la armadura bucal que también está extendida

¡ ventralmente; glosa libre (Fig. 4).

| Figura 4. Pupa, a: vista dorsal (izquierda) y ventral (dere-

cha); b: vista lateral. No se observan mayores modificacio-

¡ nesen el tegumento, a excepción de las espinas abdomina-

Il les tergales translúcidas.

DISCUSIÓN

El género Pachodynerus ha sido poco estudia-

do, tanto desde el punto de vista taxonómico

como biológico (Carpenter, 1986). En Chile

está representado por dos especies (P. gay: y P.

| peruensis), cuya nidificación y estados inmadu-

ros eran hasta ahora desconocidos.

Uno de los aspectos más interesantes de la

nidificación de P. peruensts, es que las áreas de

nidificación están en una zona desértica, sin

agua disponible, excepto la que pueden obte-

ner del néctar. La zona, además de ser una de

las más áridas del mundo, presenta una vege-

tación compuesta casi exclusivamente por 5

especies de Prosopis (Aguilera et al., 1986), y

escasas plantas de otros géneros (Toro et al.,

1991). Los otros Eumeninae de Chile están,

generalmente, asociados a lugares donde hay

agua suficiente para poder fabricar sus nidos

de barro, y con vegetación relativamente

abundante.

A partir del estudio de los nidos, se observa

que hay poca variación en su construcción y se

puede obtener, en base a algunos caracteres,

un patrón estructural básico (Fig. 2A), que

serviría de comparación con otras especies del

mismo o de otros géneros. En P. peruensis exis-

te una chimenea externa, a diferencia de lo

que describe Iwata (1976) para otras especies

del género, lo que corresponde bien a una

plasticidad en el comportamiento y justifica lo

dicho inicialmente en cuanto a la necesidad de

conocer las especies de esta subfamilia que

tienen conductas flexibles y diferentes entre

sí. Varias interpretaciones existen en relación

a la función que tienen las chimeneas, como

por ejemplo, impedir entrada de parásitos

(Iwata, 1976), evitar que entre agua a las gale-

rías y las celdillas (Evans £e Matthews, 1974) o,

en el caso de P. peruensis parece que, aparte del

rol que pudiera tener para evitar el acceso de

parásitos, tienen un papel muy importante en

impedir la entrada de granos de arena, que

son diariamente desplazados por los fuertes

vientos de la región, demostrando así que la

estructura puede ser adaptable a diferentes

condiciones ambientales.

En esta especie, como en otros Eumeninae,

también la oviposición se realiza antes del

abastecimiento de las celdillas. El huevo pre-

senta una forma y posición semejante al géne-

ro Euodynerus (Iwata, 1976).

Hay varios autores que han clasificado los

himenópteros por medio de sus formas inma-

duras (Reid, 1942; McGinley 8: Rozen, 1987;

Evans €e West-Eberhard, 1970), lo que corres-

ponde a un diferente punto de vista que pue-

de ser interesante, para ayudar a aclarar pro-

blemas que no han sido solucionados por la

morfología de los adultos. P. peruensis con-

cuerda con los caracteres que Reid (1942) esta-

blece para las larvas de Eumeninae, pero pre-

senta caracteres propios como los del espirá-

culo, maxilas y mandíbulas.

En relación a los datos sobre el abasteci-

miento, Iwata (1976) cita 21 individuos, como

un elevado número de larvas para una sola

celdilla de avispas de la subfamilia Eumeni-

50 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

nae; la gran cantidad de larvas encontradas

para P. peruensis (hasta 106 por celdilla), la

convierten en una especie controladora de le-

pidópteros en la zona de la Pampa del Tama-

rugal (Fig. 5) en donde los lepidópteros consti-

tuyen un serio problema para las especies de

Prosopas allí presentes. Especialmente eficiente

en el caso de lthome sp. (Lepidoptera, Walshii-

dae) que según estudios realizados “puede

comprometer hasta el 90% de los racimos flo-

rales (de Prosopis)... y cuyos enemigos natura-

les son escasos y en baja frecuencia”, por la

dificultad de atacar a la larva del lepidóptero,

que vive dentro del botón floral (Aguilera et

al., 1986). En las celdillas de P. peruensis, el

mayor porcentaje de presas colectadas para

alimentar a las larvas correspondía a esa espe-

cie de polilla.

AGRADECIMIENTOS

Se agradece a la Corporación Nacional Fores-

tal (I Región), por haber permitido la realiza-

ción del presente trabajo, en la Reserva Fores-

tal “El Refresco”, en la Pampa del Tamarugal.

Nuestros sinceros agradecimientos, van

también, para el profesor Haroldo Toro G. de

la Universidad Católica de Valparaíso, por la

revisión crítica del manuscrito y a la Sra. Car-

men Tobar, quien confeccionó los esquemas y

dibujos de los ejemplares.

LITERATURA CITADA

AGUILERA, A.; D. BOBADILLA; R. CorTÉs € H. VarGas.

1986. Estudio de insectos que atacan al tamarugo (Pro-

sofis tamarugo) y algarrobo (Prosopis chilensis). Informe

Técnico. Universidad de Tarapacá. Instituto de Agro-

nomía.

CARPENTER, J.M. 1982. The Phylogenetic relationships

and natural clasification of the Vespoidea (Hymenop-

tera). Systematic Entomology, 7: 11-38.

Figura 5. Celdilla mostrando en su interior larvas de lepi-

dópteros que servirán de alimento a la larva del himenóp-

tero.

CARPENTER, J.M. 1986. The Genus Pachodynerus in North

America (Hymenoptera: Vespidae: Eumeninae).

Proc. Entomol. Soc. Wash., 88 (3): 572-577.

CARPENTER, J.M. 8 J.M. CummMING. 1985. A character

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noptera: Vespidae: Eumeninae). Journal of Natural

History, 19: 877-916.

Evans, H.E. 8 R.W. MaTTHEWS. 1974. Notes on nests and

prey of two species of ground-nesting Eumeninae

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(5-6): 149-153.

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David Charles, Newton Abbot. 1-265.

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(Hymenoptera: Anthophoridae) 1 Parte. Acta Ento-

mológica Chilena, 16: 97-111.

A...

Rev. Chilena Ent.

1991, 19:

NED

OBSERVACIONES SOBRE EL GÉNERO PYCNOSIPHORUS:

GRUPO FASCIATUS (COLEOPTERA: LUCANIDAE)

JAcoBo NUMHAUSER A

RESUMEN

Se estudian 132 ejemplares de Pycnosiphorus provenientes de diversas localidades del sur de Chile,

entre los 35%40' y 40%S. Los especímenes tienen en común, el de pertenecer al grupo de P. fasciatus,

actualmente con dos especies conocidas: P. fasciatus (Germain) y P. calverti (Nagel). Se diferencian

ambas especies considerando 14 caracteres, tanto de morfología externa como de la genitalia de macho

y hembra; se incluye dibujos y una clave para separar ambas especies. Se discute la validez taxonómica

de P. ariasi Weinreich.

ABSTRACT

A sample of 132 Pycnosiphorus is studied. The material was collected in different localities of southern

Chile between 3540" to 40%S. The insects belong to P. fasciatus group, actually with two valid species: P.

fasciatus (Germain) and P. calverti (Nagel). 14 morphological characters were considered to differentia-

te both species, including genitaliad and 2; drawings and a key of species is included. P. anasi

Weinreich is discussed its taxonomic validity.

INTRODUCCIÓN

En 1855 Germain describió un pequeño lucá-

nido, denominándolo Dorcus fasciatus, colecta-

do en algún lugar de Concepción, caracteriza-

do por la presencia de tres franjas claras sobre

los élitros. Las áreas claras tienen abundantes

picnoescamas amarillentas que se insertan en

la densa puntuación de la superficie elitral.

Estas áreas están interrumpidas por solevan-

tamientos del tegumento en forma de bandas

negras, lisas y brillantes. El primer dibujo pu-

blicado muestra una hembra en la que alter-

nan cuatro áreas claras con tres bandas negras

(Parry, 1864). Algunos autores destacaron

más las bandas negras que las áreas claras

(Deyrolle, 1864; Albers, 1891). Posteriormen-

te Nagel (1932), en un extenso aporte, descri-

bió un lucánido con sólo tres áreas claras, que

denominó Sclerostomus calverti; para este mis-

mo autor el Sclerostomus fasciatus presenta cua-

tro áreas claras, y así las representa en los

¡Sociedad Chilena de Entomología. Casilla 21132,

Santiago-Chile.

(Recibido: 25 de junio de 1991. Aceptado: 19 de octu-

bre de 1991.)

dibujos, con una característica área anterior

clara alargada longitudinalmente desde el

borde anterior del élitro, seguida de tres áreas

claras transversales en el S. fasciatus y de sólo

dos áreas claras más bien redondeadas u

“ocelatas” en el S. calverti; a este último le dio

como localidad Cunco. Didier y Seguy (1953)

reconocen estas dos especies incluyéndolas co-

rrectamente dentro del género Pyenosiphorus.

En sus dos primeros trabajos sobre el género

Pyenosiphorus, Weinreich (1958a, b) estudió

una serie de lucánidos colectados en Cher-

quenco y Termas de Tolhuaca, que presenta-

ban sólo dos áreas claras; la primera corres-

ponde al área longitudinal anterior propia de

este grupo y la segunda a un área posterior

“ocelata”, los cuales describió como P. arast;

en su clave diferenciaba a tres especies: P.

fasciatus, P. calverti y P. arias. Sin embargo, en

un último aporte a este género, este autor

(Weinreich, 1960), terminó por desestimar la

validez de su P. ariasi dejándolo como sinon1-

mia del P. calverti; criterio en concordancia

con el de Benesh (1960). Sólo Weinreich

(1960) efectúa un estudio, aunque somero, de

genitalia; se trata en este caso de un dibujo de

genitalia de la hembra de P. calverta.

52 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

En el presente trabajo se estudia una serie

de 132 ejemplares de Pycnosiphorus, que com-

parten características propias del P. fasciatus y

del P. calverts, que han sido colectados en dife-

rentes áreas geográficas de Chile. Los objeti-

vos del estudio son precisar los caracteres

morfológicos diferenciales de las especies, es-

tudiar la genitalia del macho y de la hembra,

comentar acerca de su distribución geográfi-

ca, cotejando estos hallazgos con lo consigna-

do en la literatura. Se discutirá acerca de la

validez taxonómica del P. arias.

MATERIAL Y MÉTODO

El material lo constituyen 132 ejemplares de

Pycnosiphorus, 16 de mi colección particular y

56 depositados en la colección entomológica

del Museo Nacional de Historia Natural. Los

caracteres seleccionados para el estudio com-

parativo fueron 14, aquellos que me parecie-

ron más evidentes y simples de precisar (ver

Tablas 2 y 4 y Figs. 1 a 14). No consideré las

diferencias mandibulares, que son propias del

mayor o menor desarrollo del insecto como lo

señalé en un trabajo previo (Numhauser,

1981). De mayor importancia fue efectuar por

primera vez para este grupo, un estudio de la

genitalia en macho y en hembra. Los datos

resultantes del estudio morfológico fueron

confrontados con los de distribución geográfi-

ca de los especímenes. Se discuten los hallaz-

gos y se entrega una clave de las especies.

RESULTADOS

El material estudiado permitió confirmar la

existencia de dos especies para este grupo de

Pycnosiphorus, que comparten la característica

de presentar en la superficie elitral unas áreas

o franjas de color claro amarillentas, acribilla-

das de puntuación, llenas con picnoescamas

amarillas, en todo semejantes a las que se ubi-

can tanto en la cinta marginal como en otras

partes del tegumento, como en la excavación

cefálica y del protórax. En P. fasciatus la pun-

tuación es escasa, con un diseño dorsal proto-

rácico muy peculiar: las áreas deprimidas for-

man una X rodeada por un reborde en forma

de U invertida o herradura con una escotadu-

ra medial anterior. En tanto en P. calverti el

reborde es más bien ojival y el diseño insinúa

una Y, la escotadura media anterior es similar

en ambas especies. La hembra P. calverti ofre-

ce un tegumento acribillado de gruesa pun-

tuación. El tamaño de estas especies se aprecia

en Tabla 1; las hembras tienen un tamaño

promedio de 12 mm en ambas especies, en

tanto el macho P. fasciatus alcanza un tamaño

promedio de 16 mm, y de sólo 14 mm el ma-

cho P. calverts.

TABLA 1

VARIABLES MORFOMÉTRICAS DE

PYCNOSIPHORUS GRUPO FASCIATUS

P. fasciatus P. calverti

s) rango 12-19 mm 11-16 mm

promedio 16 mm 14 mm

Q rango 10,5-14 mm 10,5-13 mm

promedio 12 mm 12 mm

Las características de las áreas claras elitra-

les se consignan en la Tabla 2, encontrándose

que el área 1 longitudinal anterior es más cor-

ta en P. fasciatus y más larga en P. calverti

llegando a sobrepasar la mitad del élitro. En P.

fasciatus se aprecian tres nuevas áreas claras, la

2 es “fasciata” sólo en un 54%, en tanto el área

3 es “fasciata” en todos los ejemplares. En P.

INABIVAA

DISTRIBUCIÓN PORCENTUAL,

SEGÚN ÁREAS CLARAS ELITRALES

Y VARIACIONES, DE LOS EJEMPLARES

EXAMINADOS

P. fasciatus P. calverti

área 1 longitudinal longitudinal

sin variaciones sin variaciones

= 57 (100%) = 28 (90,3%)

con variaciones con variaciones

= ( =3

área 2 fasciata ocelata

= 31 (54%) = 16 (52%)

ocelata otras formas

= 17 (30%) = 15 (48%)

otras formas

= 9 (16%)

área 3 fasciata no existe

= 57 (100%)

área 4 ocelata abierta no existe

hacia el ápex

= 57 (100%)

Numhauser: Especies de Pycnosiphorus grupo fasciatus 53

calverti, sólo existe un área clara que sigue el

área longitudinal, que puede ser “ocelata”,

“fasciata” o con otras variaciones. Llama la

atención que la forma “ocelata” del área 2 es

francamente menos frecuente en los ejempla-

res colectados en Termas de Tolhuaca, 52%,

porcentaje que sube al 80% para el resto de las

áreas donde se colecta P. calverti. Esta forma

“ocelata” del área clara 2 en P. fasciatus es muy

característica de los especímenes colectados en

las altas cumbres de la cordillera de Nahuel-

buta.

Con respecto a la protuberancia retro-

ocular de los machos de P. fasciatus, está pre-

sente en todos los ejemplares examinados y en

ninguno de P. calverti. Se trata de un tubérculo

en los ejemplares más pequeños o de una fuer-

te espina en los mayores, ubicada en el rebor-

de cefálico del ángulo lateroposterior. Otro

rasgo diferencial de las especies es el pequeño

cuerno medial anterior en la excavación cefá-

lica de la hembra de P. fasciatus, que no existe

en la hembra de P. calverti,, en la que si se

aprecia una fuerte puntuación. En Figuras l a

8 se muestran los adultos de ambas especies,

además de diversos detalles de la morfología

externa.

La genitalia es estudiada por primera vez

(ver Figs. 9-14); la hembra P. calverti muestra

unos estilos más cortos y gruesos, armados con

cortas setas, en tanto la hembra de P. fasciatus

presenta estilos más largos y angostos, con

escasas y largas setas. La genitalia del macho

de P. fasciatus muestra parámeros más peque-

ños que la pieza basal, más juntos, con borde

nítido y armados con abundantes setas cortas;

en cambio, el macho P. calverti tiene paráme-

ros de igual tamaño que la pieza basal, más

separados, con un ancho reborde estriado y

armados con escasas setas. Ambas especies tie-

nen el pene terminado en un ancho y largo

flagelo, del largo de todo el tegmen en P.

fasciatus y al menos dos veces ese largo en P.

calvert?.

La distribución geográfica de la muestra se

resume en la Tabla 3 de acuerdo a los datos

consignados en las etiquetas, P. fasciatus se

colecta en la cordillera de Nahuelbuta y áreas

vecinas, a excepción de 8 ejemplares colecta-

dos por P. Germain en Pemehue en 1896; y de

3 especímenes de La Unión, fundo Curimón,

Cudico. P. calverti se colecta desde Altos de

Vilches en Talca hasta en Huellelhue, Valdi-

via; pero indudablemente la mayor represen-

Vy YY y , AS

ao Y AN

e”,

14 a

Pp y

TÁ

e.”

Figuras 1-4. Pycnosiphorus fasciatus (Germain). 1. Adulto, macho. 2. Clípeo; a = hembra, b=macho, 3. Cabeza, hembra.

4. Diseño elitral, tipo “ocelata”.

54 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

TABLA 3

PROCEDENCIA GEOGRÁFICA DE LAS ESPECIES DEL

GRUPO FASCIATUS

P. fasciatus — P. calverti

JOAO Talca: Altos de Vilches — l

37-38" Cordillera de Nahuelbuta,

Concepción y áreas vecinas 63 l

38%15'-39% Cordillera de los Andes:

Pemehue 8 9

Lag. Malleco sas 1

Termas Tolhuaca — 22

Rucalemu e 9

Curacautín = 3

Termas Río Blanco = 1

Conguillío = 6

Cherquenco => 1

Temuco — 3

Villarrica pá l

40" Huellelhue. Valdivia o l

La Unión: Cudico 3 —

sin datos 7 5

Total: 84 48

tación la tiene una colecta personal en Termas En Tabla 4 se consignan para fines compa-

de Tolhuaca; este material presenta más mar- rativos, una serie de caracteres morfológicos

cado el llamativo repliegue elitral longitu- con sus estados en cada una de las especies y,

dinal. en algunos casos, en los respectivos sexos.

Figuras 5-8. Pycnosiphorus calverti (Nagel). 5. Adulto, macho. 6. Clípeo; a = hembra, b = macho, 7. Cabeza, hembra.

8. Diseño elitral; a = área 2 dividida, b = áreas 1 y 2 unidas, c = área 1 dividida.

Numhauser: Especies de Pycnosiphorus grupo fasciatus

TABLA4

¡Su

ANÁLISIS COMPARATIVO DE LAS ESPECIES DEL GRUPO FASCIATUS

P. fasciatus Germain

P. calverti Nagel

Localidad

Cabeza d : Protuberancia retrocu-

lar

Cabeza $: Puntuación

Cuerno medial

Élitros:

Áreas claras: No

Área 1 (anterior)

Área 2 (media)

Área 3 (posterior)

Área 4 (apical)

Repliegue longitudinal lateral

Bandeleta

Segmentos abdominales: 8” en g

Cordillera de Nahuelbuta, Chivi-

lingo, Contulmo, Cayucupil.

Presente.

Escasa.

Presente.

Corta y ancha longitudinal.

Transversal y ancha continuán-

dose con la bandeleta lateral;

otras son más bien “ocelata”.

Transversal típicamente “fascia-

“Ocelata” abierta hacia el ápex eli-

tral.

Ausente.

Más ancha, no deja borde libre.

Borde en cúpula, cerdas más

gruesas.

Termas de Tolhuaca, Rucalemu,

Conguillío.

Ausente.

Abundante.

Ausente.

Larga y angosta longitudinal.

Area más bien circunscrita u

“ocelata” con algunas variaciones.

Ausente.

Presente.

Más angosta y menos densa.

Borde en arco, cerdas finas.

OMENTO) Apice más recto, setas más abun- Ápice más agudo, setas escasas.

dantes.

8” en Y Borde cupuliforme; cerdas finas. Borde ojival; cerdas gruesas.

Genitalia d

Parámeros (PA): Juntos, borde simple, setas abun- Separados, reborde estríado, con

dantes. escasas setas.

Pieza basal (PB): Bordes más rectos. Forma arriñonada.

Relación PA/PB PA <PB PA BB

Flagelo: Ancho y corto, del largo del Ancho y largo, dos veces el largo

tegmen. del tegmen.

Genitalia Y

Estilos: Más largos, con escasas y largas Más cortos; setas.

setas.

DISCUSIÓN de este grupo de Pycnosiphorus va seguida de

Las publicaciones previas se basaban en un

material muy reducido, por lo que algunas

diferencias más propias de variedades o for-

mas pudieron ser consideradas como distinti-

vas de especie. Así fue como Weinreich

(1958a, b) decidió que aquellos Pycnosiphorus

con 4 áreas claras correspondían al P. fasciatus,

con 3 áreas claras al P. calverti y con sólo 2 a su

P. arias. Los hallazgos del presente trabajo

concluyen que sólo se trata de dos especies, el

P. fasciatus con 4 áreas claras, aunque a veces el

área apical puede ser poco notoria, pues tien-

de a confundirse con el resto de picnoescamas

del tegumento apical del élitro; en tanto la

otra especie, el P. calverti, presenta sólo dos

áreas claras; la anterior y longitudinal propia

un área “ocelata” en un 52% y de otra forma

en el 48% restante. Las variedades correspon-

den a material colectado en zonas alejadas

unas de otras, la mayor cantidad de esta mues-

tra proviene de localidades propias de los ti-

pos, o de áreas similares, a excepción de esos 8

ejemplares P. fasciatus de Pemehue, zona muy

cercana a Termas de Tolhuaca, localidad pro-

pia del P. calverta, y de 1 ejemplar P. calverta

etiquetado como proveniente de Concepción,

área característica del P. fasciatus. Nuevas co-

lectas podrían dilucidar esta cuestión; pues

bien, parece ser que el P. fasciatus tiene una

distribución desde Concepción hasta Valdivia

por la cordillera de la Costa, en tanto el P.

calverti se localizaría desde Talca hasta Temu-

co por la cordillera de los Andes.

56 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

Figuras 9-14. 9, 11, 13. Pycnosiphorus fasciatus (Germain). 10, 12, 14. Pycnosiphorus calverti (Nagel). 9 y 10. Octavo segmento

abdominal, macho. 11 y 12. Detalle de la genitalia, hembra. 13 y 14. Esquema de la genitalia, macho.

Decidí aceptar la determinación de Wein-

reich (1960), a propuesta del propio Benesh

(1960), de darle característica de sinonimia de

P. calverti al P. ariasi, aunque la descripción,

dibujos y localidad de esta especie descrita por

Weinreich (1958a, b) calzan perfectamente

con los hallazgos en este trabajo con el P. cal-

verti, y no con el dibujo original de Nagel

(1932) que le atribuyó 3 áreas claras al P. cal-

verti. Como el tipo original descrito por Nagel

había desaparecido, no hay la posibilidad de

confirmar o rechazar la opinión de Weinreich.

Hasta no haber nuevos datos me atengo a la

decisión final de Weinreich.

Especies válidas del grupo P. fasciatus:

Pycnosiphorus fasciatus (Germain, 1855)

(Dorcus)

Pycnosiphorus calverti (Nagel, 1932) (Scleros-

tomus) = Pycnosiphorus ariasi (Weinreich,

1958).

CLAVE DIFERENCIAL DE LAS ESPECIES

1. Pequeños lucánidos que habitan los bosques de Notho-

fagus de Chile y Argentina, caracterizados por poseer

una bandeleta marginal de picnoescamas amarillentas

o rojizas, además de diversos diseños de la superficie

del protórax y de los élitros, según las espe-

E A o o A género PYCNOSIPHORUS.

— Pycnosiphorus con áreas claras elitrales llenas de pic-

noescamas amarillentas, delimitadas por solevanta-

mientos del tegumento, negros, lisos y brillantes. Las

áreas claras pueden ser de 2 a 4, según las especies;

pero, siempre existe un área clara anterior que se

dirige longitudinalmente desde el borde anterior del

élitro hacia atrás ...... grupo FASCIATUS ...... Ze

2. Presentan un área clara elitral anterior larga, a la que

le sigue un área clara más pequeña. El macho carece de

protuberancia en el borde retrocular y la hembra

carece de cuerno medial en la excavación cefálica. La

depresión protorácica tiene una forma de Y. El flagelo

del pene es al menos dos veces el tamaño del teg-

A E eds O e Pycnosiphorus calverts.

3. Presentan un área clara anterior corta, a la que le

siguen 3 áreas claras, “fasciatas” u “ocelatas”. El macho

posee una protuberancia en el borde retrocular y la

hembra un cuerno medial en la excavación cefálica. La

depresión protorácica tiene una forma de X. El flagelo

del pene no sobrepasa el tamaño del tegmen

nt errada td Pycnosiphorus fasciatus.

Numhauser: Especies de Pycnosiphorus grupo fasciatus 57

AGRADECIMIENTOS

A los correctores de trabajos de la Sociedad

Chilena de Entomología por sus valiosas y

prolíficas sugerencias. Agradecimientos espe-

ciales a don Mario Elgueta por haber dispues-

to de un tiempo especial para revisar juntos las

correcciones y por facilitarme ver el material

de Pycnosiphorus depositado en la colección del

Museo Nacional de Historia Natural.

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Rev. Chilena Ent.

1991, 19: 59-64

FECAS DE HERBÍVOROS INTRODUCIDOS EN CHILE SEMIÁRIDO

COMO HÁBITAT PARA EL DESARROLLO DE INSECTOS

Francisco SÁIz'

RESUMEN

Se describe el desarrollo de dos especies de insectos en el interior de fecas de caprinos en Chile

semiárido: un microlepidóptero y un coleóptero Ptinidae.

Se discute la función del tubo de seda elaborado por la larva del microlepidóptero en el exterior de

la feca y el posible rol de ambas especies en la descomposición de este tipo de fecas, así como su aporte

de nutrientes al suelo.

ABSTRACT

The present paper describes the biological cycle of two insects inhabitant inside the goat-dung in

semiarid Chile. The insects belong to a microlepidopteran and a Ptinidae (Coleoptera) species.

The rol of the silk-tube, elaborate by the microlepidopteran larva externally to the goat-dung, and

the possible effects of larvae on decomposition and on soil fertilization are discussed.

INTRODUCCIÓN

La descomposición de fecas de herbívoros en

zonas áridas y semiáridas se ve dificultada y

retardada por las altas temperaturas y la baja

humedad ambiental, factores que limitan la

acción de los descomponedores al provocar su

rápido desecamiento y encostramiento. Esto

es particularmente importante en las fecas de

caprinos y ovinos, dado su reducido tamaño y

su alta relación superficie/volumen. Obvia-

mente, hay variaciones en su intensidad de

acuerdo a la estacionalidad climática y a los

diferentes hábitat presentes en la zona.

De acuerdo a la literatura, la participación

de Lepidoptera en la descomposición de fecas

es muy reducida. Por ejemplo, Mohr (1943),

Laurence (1954), White (1960), Macqueen y

Beirne (1974), Nakamura (1975) y Putman

(1983) no hacen mención de ellos. Merrit

(1976) en su revisión de los hábitos tróficos de

la fauna de fecas de ganado, tampoco cita a los

lepidópteros. En cambio, Nakamura (1976) y

Schoenly (1983) sí hacen mención del grupo.

"Ecología, Universidad Católica de Valparaíso, Casilla

4059, Valparaíso - Chile.

(Recibido: 2 de julio de 1991. Aceptado: 16 de agosto

de 1991).

El primero lo cita en una Tabla de datos, con

presencia mínima y sin indicar si se trata de

larvas o adultos. Schoenly, indica que Semiothi-

sa sp. (Geometridae) y Bula deducta (Noctui-

dae), se alimentan de líquidos en las primeras

fases (1-2 días) de descomposición de fecas de

bovinos y equinos. Covarrubias et al. (1982)

mencionan larvas de Lepidoptera en la des-

composición de fecas de bovinos, con baja re-

presentación, sin indicar familia ni modo de

alimentación.

Respecto a la participación de coleópteros

de la familia Ptinidae, tampoco hemos encon-

trado referencias en todos los trabajos citados

anteriormente ni en varios otros que se han

revisado.

MATERIAL Y MÉTODO

En la IV Región del país se ha introducido una

alta cantidad de ganado caprino, junto a mula-

res, ovinos y bovinos en muy inferior porcen-

taje. El modo de crianza de las cabras, las que

se dejan pastar libremente en las estepas de la

zona, tiene como consecuencia la liberación de

fecas en ambientes naturales. Estas fecas se

deshidratan rápidamente cubriéndose de una

costra dura y compacta. Las bajas precipitacio-

nes de la zona no son suficientes para disgre-

garlas.

60 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

En esta área, más precisamente en una este-

pa cercana a la localidad de Guanaqueros

(30910'00"S), se realizó el presente estudio.

Las especies vegetales dominantes son Haplo-

pappus parvifolius y Cristaria betocaemifolra

acompañadas por Hippeastrum bicolor, Plantago

tumida, Gutierrezia paniculata, Chorizante fran-

chenioides, Leucocoryne alliacea, etc. El suelo es

arenoso profundo y el 70-80% de su superfi-

cie está desprovista de arbustos. La estepa es

costera y está sometida a influencia de la nebli-

na marítima en forma más o menos regular.

En este ambiente hemos encontrado dos

especies de insectos cuyo desarrollo está liga-

do íntimamente a las fecas de herbívoros.

Una, corresponde a un Microlepidoptera de

5-6 mm de largo, posiblemente de la familia

Tineidae (Fig. 1) (Borror y DeLong, 1966),

que presenta un peculiar sistema de desarro-

llo larvario relacionado con las fecas, princi-

palmente de caprinos, pero también encon-

trado en fecas de mulares. La segunda especie

corresponde a un coleóptero de la familia Pti-

nidae.

hal

Figura 1. Esquema de la venación alar del microlepidóp-

tero.

Las observaciones de terreno fueron com-

plementadas con observaciones en Laborato-

rio. Para ello se construyeron terrarios de vi-

drio, en que las fecas se ubicaron en rejillas

adecuadas a las características del desarrollo

de los insectos.

En total se han revisado más de mil ejem-

plares de fecas de caprinos y más de 40 unida-

des de fecas de mulares.

Las determinaciones de contenido de N se

hicieron en Laboratorio de Ecología de la P.

Univ. Católica de Chile, mediante el método

del microKjeldhal.

ASPECTOS DEL CICLO DE

DESARROLLO Y DISCUSIÓN

A. Sobre la especie de Microlepidoptera”

En terreno, las fecas con larvas no se distin-

guen a simple vista de las otras. Sin embargo,

al escarbar en la arena se detecta un vástago

recto y perpendicular de unos 5-6 cm, alcan-

zando a veces hasta 9 cm, introducido en la

arena (Fig. 2). Estos vástagos habitualmente se

presentan de a uno por feca, pero hay un

porcentaje superior al 10% con 2 o más vás-

tagos.

Revisados en detalle dichos vástagos se de-

tecta que son tubos de seda tejidos por la larva

del microlepidóptero (Fig. 3), los cuales están

regularmente recubiertos por granitos de are-

na y les dan un aspecto externo de raicilla (Fig.

4). El lumen se mantiene siempre abierto, a lo

cual concurre la cubierta externa de granos de

arena. No es infrecuente que se desarrollen

tubos de conexión entre fecas contiguas, sin

Figura 2. Posición de las fecas de caprino en el suelo,

mostrando los tubos perpendiculares.

“La determinación específica aún no ha sido enviada

or el especialista.

Sálz: Desarrollo de insectos en fecas de hervíboros 61

que necesariamente de éstas se desarrolle un

tubo perpendicular.

El tejido de seda se prolonga al interior de

la feca donde habitualmente se alimenta la

larva (numerosas excretas son visibles) (Fig.

5).

Figura 3. Características del tubo de seda recubierto por

granitos de arena.

Figura 4. Posición del tubo de seda y de la exuvia pupal en

la feca de caprino.

Figura 5. Posición de la exuvia pupal después de la emer-

gencia del imago del microlepidóptero. Se observan ade-

más 4 excretas larvarias.

Nuestras observaciones nos llevan a pensar

que el tubo tiene por función facilitar el des-

plazamiento de la larva en profundidad en

busca del recurso agua. Hay que recordar que

se trata de un medio arenoso, de fácil percola-

ción y con frecuente presencia de neblina cos-

tera, la que habitualmente se condensa en la

superficie del suelo durante la noche. Esta

neblina o camanchaca es a veces muy densa. El

agua obtenida por este mecanismo le permiti-

ría usar un alimento muy seco como son los

restos vegetales del interior de la feca. ¿Podría

pensarse en alimentación fuera de la feca?

Aparentemente no, ya que las excretas de las

larvas, grandes y esféricas, repiten las estruc-

turas de las fecas hospederas.

Llegado el período de pupar, la larva (Fig.

6) tapiza con seda el espacio interior de la feca

dejado por su actividad de alimentación, con-

Figura 6. Aspecto de la larva neonata del microlepidóp-

tero.

62 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

formando una especie de capullo. Este tapiza-

do se hace continuando el tubo que sale al

exterior y dispuesto en la misma dirección que

éste, casi hasta tocar la superficie fecal opuesta

a la entrada del tubo.

Desarrollado el imago, éste emerge por un

orificio en la pared opuesta a la entrada del

tubo. Para ello, la parte de la pupa que com-

promete a cabeza y tórax sobresale de la feca,

quedando en su interior el sector correspon-

diente al abdomen (Fig. 5). Luego se escinde la

cubierta pupal y emerge el adulto.

En terreno, y en contacto directo con la

arena en área de fecas de caprinos, hemos

encontrado también una hembra brachyptera

en plena postura de huevos. Éstos son blan-

quecinos, algo más largos que anchos, esferoi-

dales, con 12-14 bandas anchas de polo a polo,

ligeramente diferenciadas por líneas más le-

vantadas y cubiertas por fina estriación para-

lela en sentido transversal (Fig. 7).

Figura 7. Aspecto general del huevo del microlepidóp-

tero.

En algunas fecas se ha encontrado un capu-

llo más denso, cortado rectamente en un ex-

tremo, el que estaría indicando la presencia de

un parasitoide tipo Apanteles (Caltagirone,

com. personal).

En cuanto a la magnitud del rol de este

modo de vida en la descomposición de las

fecas, pensamos que es poco determinante.

Ello porque: a) no hay destrucción de la feca

con liberación de excretas de la larva, ya que la

actividad de ésta no le resta resistencia, b) el

área comida no es total y es casi totalmente

reemplazada por las gruesas excretas de la

larva y c) no afecta a la totalidad de las fecas.

Por otra parte, el hecho de que el tamaño de

las excretas de las larvas sea grande y la estruc-

tura de las mismas muy grosera, haría pensar

en poca eficiencia asimilativa y reciente utiliza-

ción de este medio de vida.

En recursos parcialmente similares, como

son los cadáveres y otros restos animales, se

menciona a las familias Pyralidae, Tineidae y

Oecophoridae (microlepidópteros) partici-

pando como succionadores de líquidos (adul-

tos) o comiendo material seco (larvas, princi-

palmente). En algunas especies, particular-

mente de Tineidae, sus larvas construyen ga-

lerías para desplazarse entre los restos o gra-

nos (ataque a productos almacenados) en que

viven. De esta última familia se cita a Monopas

rusticella Clerck como especie asociada a restos

animales secos y pellets de lechuza, pero no se

mencionan estructuras como las aquí descritas

(Smith, 1986). Trichopaga tapetzella (L.), la poli-

lla de los tapices, construye un túnel recubier-

to de seda entre los tejidos (Borror y DeLong,

1966; Metcalf y Flint, 1965).

En fecas de mulares, dado su mayor tama-

ño, el número de tubos desarrollados, y por

ende de larvas del microlepidóptero (la misma

especie antes descrita), es muy alto por unidad

de feca, contándose fácilmente 25 o más por

unidad.

B. Sobre la especie de Ptinidae”

En otras fecas de caprinos, sin ninguna señal

externa hasta la emergencia del adulto, se de-

sarrolla una especie de Ptinidae. Comparacio-

nes con el material del Museo Nacional de

Historia Natural nos lleva a pensar en el géne-

ro Ptinus, o en un género cercano a él.

La larva, típica del grupo, tiene forma cur-

vada en C, casi escarabeiforme, con mandíbu-

las fuertes y desarrollo cefálico acentuado, con

pilosidad larga y más o menos densa, blanque-

cina cuando joven y amarillo caoba al final de

su desarrollo. Se alimenta vorazmente del in-

terior de la feca dejándola, al final de su ciclo

de desarrollo, como una esfera cubierta débil

llena de excretas muy finas y cilíndricas.

“La especie está en determinación por el especialista.

——_— -———=e

AAA

Sáiz: Desarrollo de insectos en fecas de hervíboros 63

Al terminar su desarrollo larvario cons-

truye un fuerte capullo de seda, casi esférico y

recubierto externamente por restos del mate-

¡rial circundante, dentro del cual pupa. Un

extremo del capullo queda cerca de la superfi-

cie de la feca. Al emerger el adulto, éste rompe

¡el capullo y emerge de la feca mediante un

| orificio perfectamente redondo y visible a sim-

ple vista.

En un muy bajo porcentaje (no más del 3%)

se ha encontrado desarrollo de esta especie en

fecas ya afectadas por el microlepidóptero.

Este tipo de desarrollo del ciclo vital de la

especie nos parece que tiene un efecto claro en

¡la descomposición de las fecas porque: a) con-

sume la casi totalidad del contenido de la feca

del caprino y lo transforma en pequenñísimas

unidades de excretas larvales que fertilizarían

el suelo, b) las fecas utilizadas por la especie se

| rompen fácilmente, tanto antes de la emer-

| gencia del adulto como después de ésta, libe-

| rando al medio las excretas de la larva.

Revisada bibliografía al respecto, práctica-

mente no se encontró información sobre esta

familia en relación a fecas de herbívoros (Me-

| rrit y Anderson, 1977; Macqueen y Beirne,

1975; Desiére, 1973, 1983 y 1987; Graef y

| Desiére, 1984; Hanski, 1980a y b; Hanski y

' Koskela, 1978).

Hasta la fecha no hemos encontrado esta

| especie en fecas de mulares.

En Borror y DeLong (1966) y en Peterson

| (1979) se cita a una especie cuyas larvas se

desarrollan en fecas de ratas (Mezium america-

|'num Lap.)

Payne y King (1969) citan a Ptinus fur 1, en

| carcasas secas de cerdos.

En cuanto al posible efecto fertilizador de la

| descomposición provocada por las dos espe-

| cies en cuestión y de acuerdo a lo anterior-

| mente expuesto y a los contenidos de nitróge-

no en las excretas de las larvas (Tabla 1), se

| esperaría un mayor efecto por la acción del

|] coleóptero Ptinidae. Ello porque incorpora

| más N por unidad de biomasa y sus excretas

son fácilmente liberadas desde las fecas del

herbívoro.

C. Fauna concomitante

¡ En las fecas de caprinos estudiadas es muy

frecuente encontrar psocópteros en estados

IPABIRAYI

CONTENIDOS DE NITROGENO (%) EN FECAS

NIENCRBIENS

Sustrato Contenido de N (%)

1,20

IMM

1,41

Fecas de caprinos

Excretas Lepidoptera

Excretas Ptinidae

preimaginales de desarrollo, siendo más evi-

dente su presencia en fecas afectadas por mi-

crolepidópteros.

Otro grupo presente es el de Acarina, parti-

cularmente representado por Actinedida y

Acaridida.

AGRADECIMIENTOS

A la Sra. Carmen Tobar por la confección de

las ilustraciones del trabajo.

DADARATORZA CICAD

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1991, 19: 65-69

OBSERVACIONES BIOLÓGICAS SOBRE CALLISPHYRIS MOLORCHOIDES

(GUERIN-MENEVILLE, 1838) (COLEOPTERA: CERAMBYCIDAE)

Juan EnrIQUE BarriGa' y Thomas FicHer!

RESUMEN

Se entregan antecedentes sobre la biología de Callisphyris molorchoides (Guér.). Se reconocen sus plantas

hospederas, todas pertenecientes a la familia Rhamnaceae y se establece la distribución geográfica de la

especie.

ABSTRACT

Itis included information concerning the biology of Callisphyris molorchordes (Guér.). Its host plants are

recogniced (all belonging to Rhamnaceae family), and it is stablished the geografical distribution of this

species.

INTRODUCCIÓN

Guérin-Méneville (1838) describe esta especie

bajo el nombre de Stenopterus molorchoides; pos-

teriormente Fairmaire y Germain (1859) la

redescriben, ubicándola en el género Callis-

phyris Newm.

Porter (1923), se refiere a un ejemplar cap-

turado en la Prov. de Valparaíso; posterior-

mente Bosq (1953), efectúa algunos comenta-

rios sobre esta especie y la cita como presente

en la República Argentina (Prov. de Neu-

quén: San Martín de los Andes y Nahuel

Huapi).

Cerda (1986), cita a Callasphyris molorchoides

como distribuido en las provincias de Valpa-

raíso, Santiago y Malleco, siendo esta especie

una de las de distribución más septentrional

del género.

El objetivo del presente trabajo es presentar

observaciones acerca de la biología y plantas

hospederas de la especie

Observaciones preliminares permitían pos-

tular que Colletia sp. y Trevoa sp. (Rhamna-

"Facultad de Agronomía, Universidad de Chile, Casi-

lla 1004, Santiago-Chile.

(Recibido: 3 de julio de 1991. Aceptado: 11 de octubre

de 1991.)

ceae), serían las plantas hospederas de este

cerambicido.

MATERIALES Y MÉTODOS

El área de estudio se encuentra delimitada por

las localidades de Zapallar (Prov. Petorca) y

Guardia Vieja (Prov. Los Andes) por el Norte

y Alto Vilches (Prov. Talca) por el Sur, entre el

nivel del mar y los 1.600 m de altitud; además

se efectuaron prospecciones en la cordillera

de Ñuble y Malleco.

Este estudio se efectuó entre septiembre de

1987 y abril de 1991; en este período se reali-

zaron numerosos muestreos, colectándose

ejemplares adultos y/o larvas, para determi-

nar el ciclo de vida de C. molorchoiwdes en esta

zona. Además se hicieron observaciones para

determinar el tipo de daño que ocasiona la

larva al alimentarse, vegetales a los cuales se

encuentra asociado y aspectos conductuales

de larvas e imagos.

Para este efecto, de las ramnáceas supuestas

como hospederos de la especie, se recolecta-

ron ramillas (de 0,3 a 1,5 cm de diámetro) que

estaban secándose en su extremo, o ramas (1,5

a 3 cm), troncos (3 a 10 cm) y raíces (> 1 cm)

que poseían un daño notorio proveniente de

un taladrador. En laboratorio, se mantuvo es-

tas muestras las que fueron abiertas a interva-

66 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

los de tiempo regular (mensual), para apreciar

el estado de desarrollo del insecto.

RESULTADOS

Se observó que Callisphyris molorchoides vuela

durante el día, en la mañana o al atardecer,

alrededor de ramnáceas principalmente del

género Colletia y Trevoa, durante los meses de

primavera y verano. En dichas plantas se de-

tectó la presencia de ramas afectadas y en su

interior se constató la existencia de galerías

que alcanzaban hasta 60 cm de longitud.

El ataque de esta especie se realiza en plan-

tas vivas, donde la hembra ovipone en ramillas

mayores de 0,3 cm de diámetro y ramas y

troncos de hasta 10 cm de diámetro. El huevo

es colocado libre sobre la superficie lisa del

vegetal, pegado con una substancia cementan-

te (Fig. 1), no habiéndose encontrado huevos

en rendijas o grietas de la corteza. Al eclosio-

nar, la larva horada la rama o tronco en direc-

ción siempre descendente. En el caso de ramas

delgadas (como excepción en algunas más

gruesas), la larva suele producir 1 a 4 cortes

perpendiculares a esta (Fig. 1), cayendo el ex-

tremo apical de la ramilla (la larva siempre

queda en el extremo del corte unido a la plan-

ta); este corte es similar al producido por otras

especies de Callisphyris, lo que le ha valido a las

especies de este género el nombre común de

“sierras”.

Figura 1. Huevos de C. molorchoides y corte perpendicular

producido por la larva, sobre Colletia hystrix.

La larva luego de penetrar a la planta co-

mienza a horadar una galería en forma sub-

cortical y descendente, pudiendo abarcar todo

el diámetro en aquellas ramillas muy delga-

das. En algunas ocasiones pueden presentar-

se, en la base del tronco y raíces, galerías bifur-

cadas con los brazos paralelos, hechas por una

sola larva, o galerías muy tortuosas en los tron-

cos. El diámetro de la galería es sumamente

variable, tanto debido a la ubicación en la

planta, al tamaño de la larva, a la planta hospe-

dera, o la duración del ciclo de vida.

En su última etapa la larva forma una cáma-

ra engrosando el diámetro de la galería y per-

forando un orificio, el cual posteriormente

tapa con viruta para facilitar luego la salida del

adulto (Fig. 2); en esta cámara pupa, perma-

neciendo de 3 a 5 semanas en este estado antes

de la emergencia del adulto (Fig. 3). El ciclo

completo duraría aproximadamente 24 me-

ses. En laboratorio se comprobaron algunos

casos en que el ciclo duró 12 meses o, muy

raramente, 36 meses o más (los períodos dife-

rentes a 24 meses son aparentemente induci-

dos por el medio, a causa de altas temperatu-

ras, déficit hídrico del hospedero, o proble-

mas de alimentación de la larva).

Con los resultados obtenidos se puede pro-

poner un ciclo biológico para esta especie, en

la zona en estudio, representado en las Figs. 4

a 6.

Se observa un desfasamiento temporal en la

ocurrencia de los diferentes estadios del desa-

Figura 2. Cámara pupal de C. molorchoides con el orificio )

de emergencia taponado con viruta. |

Barriga y Fichet: Biología de Callisphyris molorchowdes 67

Figura 3. Cámara pupal de C. molorchoides sobre Colletia

hystrix, con un imago en su interior.

rrollo de norte a sur, siendo las poblaciones

septentrionales más precoces que las australes

(Fig. 4 y 6). Las poblaciones de la cordillera

costera central presentan una situación inter-

media (Fig. 5).

Plantas hospederas:

Hasta el momento no se conocían los hospede-

ros de esta especie, por lo que aquí se hace

entrega de los nombres de aquellos en que se

detectó ataque en terreno.

Todos los hospederos conocidos (en el mis-

mo orden de importancia), pertenecen a los

géneros Colletía (crucero, llaqui, yaquil), Tre-

voa (tebo, trebo) Retantlla (retamo, retanilla) y

Discaria (chacay, crucero, llaqui, yaquil), de la

familia Rhamnaceae.

Meses

e A A

—Imago en camara ——

—Imago emergido ==

—= Huevo —

=larva

=Pupa ==

Figura 4. Ciclo biológico de C. molorchoides (Guér.) estima-

do para la cordillera de los Andes, Región Metropolitana y

V Región, entre 600 y 1.500 m (26 meses).

Estados ESA SN Ñ . MS

-Imago en cámara —

—Imago emergido —

—= Huevo _—

=larva

=Pupa =1E

AAA NA AA

Figura 5. Ciclo biológico de C. molorchoides (Guér.) estima-

do para la cordillera de la Costa entre las Regiones V y VI

(25 meses).

Meses

Estados ER EAN

—-Imago en camara —

—Imago emergido ==

— Huevo —

=larva

=Pupa A —

Figura 6. Ciclo biológico de C. molorchoides (Guér.) estima-

do para la cordillera de los Andes entre las Regiones VII y

IX, sobre Colletia spp. (24 meses).

En el mismo orden de importancia, en la

zona en estudio se la detectó atacando princi-

palmente arbustos de: Colletia hystrix Clos

(tronco, ramas y ramillas), Trevoa trinervis

Miers. (ramas y ramillas), Colletia ulicina Gill.

et Hook (ramas principalmente), Trevoa spin:-

fer Clos (ramas y ramillas), Retamilla ephedra

(Vent.) Brongn. (ramas, tronco, base del tron-

co y raíces), y Discaria chacaye (G. Don) Tortosa

(ramas y ramillas); en mucho menor nivel en

Discaria trinervis (H. et A.) Reiche. (ramas y

ramillas) y Retanilla stricta H. et A. (ramas).

La distribución del principal hospedero,

Colletia hystrix es la más amplia de todas, en-

contrándose desde los 28930" (valle del Huas-

co), hasta los 47? lat. Sur (península de Tai-

tao), y desde el nivel del mar hasta los 2.000 m.

Esto hace pensar que C. molorchoides podría

encontrarse más al Norte y más al Sur de lo

detectado hasta ahora. El resto de las especies

detectadas como hospederos, se superponen

en distribución a Colletía hystrix (ver Fig. 7).

68 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

MATERIAL ESTUDIADO

(de norte a sur, por provincias;

las fechas corresponden

a emergencia de adultos.)

Criados de material:

—Petorca: Zapallar, X-1983, leg. J.E. Barriga,

l ej., en Trevoa trinervis.

— Valparaíso: Quintay, XI/XII-89, leg. J.E.

Barriga, 8 ej.; Casablanca, XI1-89, leg. J.E.

Barriga, 1 ej.; Las Taguas, Peñuelas, XII-

89, leg. J.E. Barriga, 6 ej.; todos criados en

Trevoa trinervis.

— Los Andes: Guardia Vieja, XI/XII-90 y I-

91, leg. T. Fichet, 9 ej.; XI/XII-90, leg. J.E.

Figura 7. Mapa de distribución de Callisphyris molorchoides

(Guér.) y de los hospederos conocidos (achurado).

Barriga, 3 ej.; todos criados en Colletia hys-

trix.

— Chacabuco: Cuesta la Dormida, XI-88, leg.

T. Fichet, 3 ej., en Colletia hystrix; X1-89, leg.

J.E. Barriga, 3 ej., en Colletiía hystrix; X1-89,

leg. J.E. Barriga, 4 ej., en Retanilla ephedra;

XI-89, leg. J.E. Barriga, leg. 2 ej., en Trevoa

ÍTINETUIS.

—San Antonio: Tunquén, XII-89, leg. J.E.

Barriga, 4 ej., en Trevoa trinervis.

— Talagante: Naltagua, 6-1-80, leg. J.E. Barri-

ga, 1 ej.; 23-XI1-89, leg. J.E. Barriga, 1 ej.;

XII-90, leg. J.E. Barriga, 7 ej.; todos criados

en Trevoa trinervis.

— Santiago: El Arrayán, 20-X1-87, leg. J.E.

Barriga, 21 ej.; 5-X1-87, leg. J.E. Barriga,

12 ej.; 5-XI-87, leg. J.E. Barriga, 10 ej. (me-

lánicos); todos criados en Colletia hystrix; Los

Dominicos, XII-90, leg. T. Fichet, 1 ej.,

criado en Trevoa trinervis: Camino a Farello-

nes, IX-89, leg. J.E. Barriga, 14 ej.; X/XI-

90, leg. T. Fichet, 8 ej. (normales y meláni-

cos); todos criados en Colletia hystrix.

— Cordillera: Río Colorado, 15-XI-87, leg.

J.E. Barriga, 31 ej.:San Gabriel, 10-X-88,

leg. J.E. Barriga, 22 ej.; El Volcán, 1.500 m,

X-87, leg. J.E. Barriga, 36 ej.; 13-XI1-88,

leg. TT. Curkovic, 1 ej.; 15-IX-89, leg. J.E.

Barriga, 12 ej.; 7-X-89, leg. J.E. Barriga, 11

ej.; X/XI/XII-89, leg. T. Fichet, 5 ej.; todos

criados en Colletia hystrix.

— Colchagua: Placilla, X1-90, leg. J.E. Barri-

ga, 3 ej., en Trevoa trinerms.

— Curicó: Los Queñes, XI1-85, leg. J.E. Barri-

ga, 1 ej.; Potrero Grande, XI-90, leg. J.E.

Barriga, 1 ej.; todos criados en Trevoa tri-

NETUIs.

— Talca: Alto Vilches, 27-X11-87, leg. J.E. Ba-

rriga, 6 ej.; XII-90, leg. T. Fichet, 3 ej.;

todos criados en Colletia ulicina.

— Ñuble: Puente Marchant, X-1989, lesa?

Barriga, 7 ej., en Colletía hystrix.

— Malleco: Termas de Río Blanco, IX-1988,

leg. J.E. Barriga, 5 ej.; Lonquimay, IX-88,

leg. J.E. Barriga, 2 ej.; todos criados en

Colletra hystrix.

Adultos colectados

(de norte a sur por provincias):

— Maipo: Rangue, 18-XII-90, leg. J.E. Barri-

ga, l ej.

Barriga y Fichet: Biología de Callisphyris molorchoides 69

— Cordillera: El Volcán, 15-X1-89, leg. J.E.

Barriga, 1 ej.

—KNuble: Puente Marchant, 21-1-1989, leg.

J.E. Barriga, l ej.

COMENTARIOS

Callisphyris molorchordes es una especie muy va-

riable en colorido, existiendo ejemplares de

coloración oscura en el extremo norte de la

zona analizada. Además es una especie apa-

rentemente muy variable en tamaño; esta va-

riabilidad se manifiesta entre ejemplares obte-

nidos de una misma planta, así como también

entre ejemplares obtenidos entre diferentes

especies de plantas, siendo aquellos criados de

Colletia ulicina los de mayor tamaño (cordillera

de Talca), seguido por los de Colletia hystrix, y

los de menor talla aquellos criados de Trevoa

sp., y Discaria sp.; normalmente son las hem-

bras de mayor tamaño que los machos.

En relación al daño que produce, se puede

señalar que es muy variable según los hospe-

deros, como también según la localidad de

donde provengan.

En la cordillera de los Andes (V Región y

Región Metropolitana), en las zonas altas

(1.000 a 1.500 m), el ataque se produce funda-

mentalmente en Colletiía hystrix, ubicándose

principalmente en las ramillas; a esta altura

hay escaso ataque a Trevoa trinervis. En las

zonas precordilleranas, en cambio, hay un au-

mento en el ataque a Trevoa trinervis y en Colle-

tía hystrix el daño es tanto en ramas como en

ramillas.

En la cordillera de la Costa, el ataque se

concentra principalmente en Trevoa trinervis,

tanto en ramillas como en ramas y en mucho

menor grado en Colletia hystrix, con daño prin-

cipalmente en ramas; en Retanilla ephedra el

daño es generalmente en el tronco, prolon-

gándose hasta las raíces.

En Ñuble y Malleco, el ataque fue detectado

sobre Colletía hystrix, afectando principalmen-

te a ramas y tronco; en esta zona solo se mues-

treó Colletía hystrix y Discaria sp., no detectán-

dose ataque en plantas de este último género.

Esta especie está ampliamente distribuida

en toda la zona en estudio, viviendo en muy

distintos ambientes, a diferencia de otras espe-

cies de cerambícidos que prefieren ciertos am-

bientes más estables (Fichet y Barriga, 1990).

Se encuentra desde lo alto de Los Andes hasta

el nivel del mar, y desde la zona xerofítica de la

V Región, hasta la humedad del sotobosque

de Fagaceas.

La principal causa de muerte de esta espe-

cie antes de salir de las cámaras pupales, sería

por aves (fueron observados tordos), los cua-

les se alimentan de las larvas, pupas o adultos

que se encuentran al interior de éstas; el daño

producido por estas aves se detectó en las ra-

millas delgadas , las cuales eran fácilmente

perforadas por sus picos.

En la zona en estudio se han encontrado

varias especies de parásitos atacando larvas de

C. molorchoides (Barriga, 1990), principalmen-

te una especie de Pteromalidae, Proglochin ma-

culipenmis Philippi; además se detectó Proglo-

chin sp., una especie de Ichneumonidae y dos

especies de Braconidae no identificados. Las

crianzas de esta especie fueron sumamente

atacadas en laboratorio por ácaros, aparente-

mente de la especie Pyemotes ventricosus Newp.,

los cuales las diezmaron.

Esta especie en estado adulto aparentemen-

te no sería atacado por aves u otros predato-

res, puesto que imita tanto en colorido, forma,

como en los movimientos que realiza y sonido

que emite al desplazarse, a avispas euménidas

del género Hypodynerus.

AGRADECIMIENTOS

AlSr. Jorge Macaya por su asesoría Botánica y

al Sr. Mario Elgueta, por la lectura crítica del

manuscrito.

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Rev. Chilena Ent.

1991, 19: 71-75

NEW RECORDS OF SOUTH AMERICAN PELORIDIIDAE

(HOMOPTERA: COLEORRHYNCHA)

DanieL BURCKHARDT! 8 Donar AGosTI

ABSTRACT

New records are given for seven Chilean species of Peloridiidae and the published information on

South American species is summarised. The new material extends the known range of South Ameri-

can peloridiids considerably to the North. Distribution patterns of South American peloridiids are

briefly discussed.

RESUMEN

Se indican nuevos registros para siete especies de Peloridiidae y se resume la información bibliográfica

existente acerca de las especies sudamericanas. El material estudiado amplía hacia el Norte, considera-

blemente, el rango geográfico, hasta ahora conocido, de los peloridiidos sudamericanos. Se discute

brevemente los modelos de distribución de los peloridiidos sudamericanos.

INTRODUCTION

Peloridiids are small, flattened bugs which live

in moist moss (Figs. 1, 2). Evans (1981) recog-

nised 25 species in 13 genera. The group is

restricted to the Southern hemisphere sho-

wing a typical antarctic distribution similar to

that of Southern Beech (Nothofagus, Betula-

ceae). Most of the biotopes in which these bugs

occur are temperate and subantarctic rain fo-

rests. Peloridiids are rarely collected as special

techniques are required sample them. Many

species are known from a single or few locali-

ties only, and little is known of their distribu-

tions.

The South American fauna comprises to

date the three monotypic genera Peloridium,

Pantinia and Kuscheloiwdes, as well as Peloridora

with three species (China, 1962; Evans, 1981;

Cekalovic, 1986). Pelorndium hammontorum and

Peloridora kuscheli are known from several

localities whereas the remaining species are

recorded only from the type locality.

'Muséum d'Histoire naturelle, Départment d'Ento-

mologie, Case postale 434, CH-1211 Geneve, Switzerland.

“Zoologisches Institut, Universitát Zúrich, Winterthu-

rerstr. 190, CH-8057 Zúrich, Switzerland.

(Received: 22 August 1991. Accepted: 30 October

1991.)

During a two months expedition to Chile in

December 1990 and January 1991, where par-

ticular emphasis on collecting forest litter

dwelling arthropods was given, we found

seven species of Peloridiidae represented by

over 560 specimens. A list of the recorded and

new localities of all South American species is

given below. A taxonomic treatment of the

material will be published elsewhere.

MATERIAL AND METHODS

All the specimens were extracted from sifted

leaf litter samples using “Winkler/Moczarski”

eclectors (Besuchet et al., 1987). Unless stated

otherwise, the material was collected by both

authors (IX and X Regions) or by the senior

author (XII Region) and is deposited in the

Muséum d'Histoire naturelle, Geneva, Swit-

zerland (MHNG), and the Museo Nacional de

Historia Natural, Santiago, Chile (MNNC).

Types from the Natural History Museum,

London, U.K. (BMNH) were studied.

LIST OF SPECIES

Peloridvuum hammoniorum Breddin

(Fig. 1)

Distribution. Recorded from Chile: XI Re-

gion, Province Aisén (Coyhaique); XII Re-

72 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

glon, Province Magallanes (Punta Arenas, Se-

no Otway), Province Antarctica Chilena (Isla

Navarino, Isla Bertrand); and Argentina:

Chubut (V. del Lago Blanco) (China, 1962, all

records published up to this date are summa-

rised here; Cekalovic, 1986). The record of

Peloridiidae from Chile: XII Region, Provin-

ce Ultima Esperanza (Río Rubens, Monte Al-

to) by Lanfranco (1977) probably concerns

Peloridium hammoniorum.

Material examined. Chile: 1 damaged

adult, IX Region, Province Malleco, Parque

Nacional Nahuelbuta, near “Administracion”,

37%50'S 73%00'W, 1.100 m. 14-17.XI1.1990,

mixed Nothofagus forest with Araucaria along

river, and pasture with shrubs, sifting of vege-

tational debris and moss; 14, IX Region, Pro-

vince Cautín, Parque Nacional Huerquehue,

between “Administracion” and Lago Chico,

39%08'-10'S 71%44'W, 800-900 m, 22-

24.X11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer fo-

rest, sifting of vegetational debris and moss;

19, 2 larvae, XII Region, Province Ultima

Esperanza, Parque Nacional Torres del Paine.

Lago Grey, 100 m, 12.1.1991, Nothofagus an-

tarctica forest, sifting of vegetational debris

and moss; 4 larvae, XII Region, Province Ulti-

ma Esperanza, Monte Alto, 52%05'S 71%55'W,

180 km NNW Punta Arenas, 400 m,

15.1.1991, Nothofagus pumilio forest, sifting of

vegetational debris and moss; 3, larvae, XII

Region, Province Magallanes, Reserva Nacio-

nal Parrillar, 53%19'S 71210'W, 300 m,

17.1.1991, Nothofagus betuloides forest, sifting

of vegetational debris.

Comment. China (1962) mentioned that

the specimen from Chubut may not be cons-

pecific with Peloridium hammontorum. The pre-

sent material is insufficient to decide whether

there are any differences between the mate-

rial from the IX and X Regions and that of the

XI and XII Regions.

Peloridora kuschel: China

(Fig. 2)

Distribution. Recorded from Chile: IX Re-

gion, Province Cautín (Lago Caburgua); X

Región, Province Llanquihue (lake Llan-

quihue, Frutillar, 15 km west of Frutillar, Vol-

Figures. 1, 2. Peloridiidae from Huerquehue National

Park. 1, Peloridiuwm hammoniorum: 2, left Pantinia darwin,

right Peloridora kuscheli.

Figure. 3. Temperate rain forest in Chiloé, Cucao.

cán Calbuco), Province Valdivia (Lago Calaf-

quén), Province Chiloé (Chepu); XI Region,

Province Aisén (mountain in the region of

Coyhaique, Puerto Chacabuco) (China, 1962;

Cekalovic, 1986).

Material examined. Chile: 18, 6 larvae, IX

Region, Province Malleco, Parque Nacional

Nahuelbuta, near “Administracion”, 37%50'S

7300'W, 1.100 m, 14-17.X11.1990, mixed

Nothofagus forest with Araucaria along river,

and pasture with shrubs, sifting of vegetatio-

nal debris and moss; 48, 3%, 88 larvae, IX

Region, Province Cautín, Parque Nacional

Huerquehue, between “Administracion” and

Lago Chico, 39%08"-10'S 71%44"W, 800-900

m, 22-24.X11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer

forest, sifting of vegetational debris and moss;

38,3%, X Region, Province Osorno, Parque

Nacional Puyehue, Aguas Calientes, 40%40'S

7220'"W, 400-500 m, 31.XI1.1990-1.1.1991,

Valdivian lauriphyllous forest along river, sif-

ting of vegetational and alluvial debris, and

moss. Chile: 1, X Region, Province Llan-

quihue, Frutillar, 300 m, 23.1X.1954, in soil

(G. Kuschel) (BMNH).

Burckhardt € Agost1: Records of South American Peloridiidae 73

Peloridora minuta China

Distribution. Recorded from Chile: X Region,

Province Valdivia (El Mirador) (China, 1962).

Material examined. Chile: 139,109,X Re-

gion, Province Osorno, Parque Nacional

Puyehue, Aguas Calientes, 40%40'S 72%20'W,

400-500 m, 31.X11.1990-1.1.1991, Valdivian

lauriphyllous forest along river, sifting of ve-

| getational and alluvial debris, and moss; 59,

62, 22 larvae, X Region, Province Osorno,

Parque Nacional Puyehue, Aguas Calientes to

Antillanca, 40%45'S 72%15'-20'W, 800 m,

2.1.1991, mixed Nothofagus forest with bam-

boo, sifting of vegetational debris and moss.

Chile: holotype 3 of P. minuta, X Region, Pro-

vince Valdivia, El Mirador, 1.600 m, 5.1.1957,

in soil (G. Kuschel) (BMNH).

Peloridora holdgates China

| Distribution. Recorded from Chile: X Region,

Province Chiloé (Cerro San Pedro) (China,

1962).

Material examined. Chile: 593, 579, 89

larvae, X Region, Province Chiloé, Cucao, 30

km SW Castro, Parque Nacional Chiloé, near

| “Administracion”, 42%37'S 74%08'W, 30 m, 4-

'6.1.1991, degraded temperate rain forest, sif-

ting vegetational debris and moss; 19, 1 larva,

X Region, Province Chiloé, Parque Nacional

' de Chiloé, Rancho Grande, near Cucao,

4233'S 74%02'W, 300-600 m, 4.1.1991, open

mixed Fitzroya forest and peat bog, sifting of

vegetational debris and moss. Chile: paraty-

pes 13,12 of P. holdgater, X Region, Province

Chiloé, Cerro San Pedro, 600 m, 8.X1.1958

(G. Kuschel, Royal Soc. Exped.) (BMNH).

Peloridora spp.

Material examined. Chile: 138 larvae: X Re-

glon, Province Osorno, Parque Nacional

Puyehue, Aguas Calientes, 40%40'S 7220'W,

400-500 m, 31.XI1.1990-1.1.1991, Valdivian

lauriphyllous forest along river, sifting of ve-

getational and alluvial debris, and moss.

Comment. So far no characters could be

found to determine Peloridora larvae to spe-

cies. As both P. kuscheli and minuta were found

at this locality the larvae cannot be associated

with adults.

Pantinta darwin: China

(Fig. 2)

Distribution. Recorded from Chile: X Region,

Province Chiloé (Chepu) (China, 1962).

Material examined. Chile: 38, IX Region,

Province Cautín, Parque Nacional Huer-

quehue, between “Administración” and lago

Chico, 39%08'-10'S 71%44'"W, 800-900 m, 22-

24.XI11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer fo-

rest, sifting of vegetational debris and moss;

19, X Region, Province Chiloé, Cucao, 30 km

SW Castro, Parque Nacional de Chiloé, near

“Administración”, 42237'S 74%08'W, 30 m, 4-

6.1.1991, degraded temperate rain forest, sif-

ting of vegetational debris and moss. Chile:

holotype d, paratypes 134,12, X Region, Pro-

vince Chiloé, Chepu, 4295, 4-11.X.1958 (G.

Kuschel, Royal Soc. Exped.) (BMNH).

Pantima sp.

Material examined. Chile: 38,28, IX Region,

Province Malleco, Parque Nacional Nahuel-

buta, near “Administración”, 37%50'S

73%00'W, 1.100 m, 14-17.X11.1990, mixed

Nothofagus forest with Araucaria along river,

and pasture with shrubs, sifting of vegetatio-

nal debris and moss.

Comment. The species differs from P. dar-

win in the shape of the apical process of the

pygophor, the more pointed apical edges of

the pygophor, the more broadened parame-

res, and the different shape of the aedeagus.

Kuschelorwdes edenensis (China)

Distribution. Recorded from Chile: XII Re-

gion, Province Ultima Esperanza (Isla We-

llington).

Gen. sp.

Material examined. Chile: 18, X Region, Pro-

vince Chiloé, Parque Nacional de Chiloé, Ran-

cho Grande, near Cucao, 42*33'S 74%02'W,

300-600 m, 4.1.1991, open mixed Fitzroya fo-

rest and peat bog, sifting of vegetational de-

bris and moss.

Comment. Based on the presence of a na-

rrow cell between Cul+2 and Pcu on the teg-

men and the parallel sided, apically truncate

scutellum the species is related to Kuschelordes,

Peloridora and Pantima. It differs from all

74 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

three in the reticulate paranota which are wit-

hout veins in Kuschelordes, and with two veins

in Peloridora and Pantinia.

Unidentified larvae

Material examined. Chile: 6, larvae, IX Re-

gion, Province Malleco, Parque Nacional

Nahuelbuta, near “Administración”, 37%50'S

73200'"W, 1.100 m, 14-17.X11.1990, mixed

Nothofagus forest with Araucaria along river,

and pasture with shrubs, sifting of vegetatio-

nal debris and moss; 24 larvae, IX Region,

Province Cautín, Parque Nacional Huer-

quehue, between “Administración” and Lago

Chico, 39%08'-10'S 71%44'W, 800-900 m, 22-

24.X11.1990, Nothofagus dombeyi-conifer fo-

rest, sifting of vegetational debris and moss.

Comments. So far no differences could be

found between the larvae of Peloridiuum and

Pantinia, so that the listed material cannot be

attributed to any of the genera.

CONCLUSIONS

The distribution of the South American pelo-

ridiids is summarised in Fig. 4, Peloridvum ham-

moniorum 1s the most widely distributed species

occurring from Nahuelbuta National Park in

the North to Isla Navarino in the South. It is

the only species which has been found outside

Chile (Argentina: Chubut). Peloridora kuscheli

covers also a fairly large area which ranges

from Nahuelbuta National Park in the North

to the region of Coyhaique in the South. The

other species are more restricted in distribu-

tion.

The material from the Nahuelbuta Natio-

nal Park is interesting as it extends the known

range of South American peloridiids conside-

rably to the North. In several localities more

than one species were found together, and, in

particular, in the Puyehue National Park, two

congeneric species (Peloridora kuscheli and mi-

nuta) were collected. This indicates that at a

local scale geographical vicariance may have

been of minor importance as impetus to diver-

sification.

The area in which peloridiids occur corres-

ponds well with Pisano's (1966) zone of hygro-

morphic plant associations, and Schmithú-

sen's (1956) region of evergreen temperate

rain forests. The region with lauriphyllous

HE Peloridium hammoniorum

O Peloridora kuscheli

A Peloridora minuta

WM Peloridora holdgatei

A Pantinia darwini

O Pantinia sp.

+ Kuscheloides edenensis

MN Gen. sp.

Figure. 4. Known distributions of South American Pelori-

diidae.

evergreen rain forests between Temuco and

Chiloé (Fig. 3) has the largest diversity with 6

species of Peloridiidae. This area corresponds

more or less with Di CastrI's (1968) “oceanic

region with mediterranean influence”.

ACKNOWLEDGMENTS

We thank M.D. Webb (BMHN, London) for

the loan of material, P. Greenslade (Canberra)

and R. Faúndez (MHNG, Geneva) for com-

ments on the manuscript draft, and N. La-

voyer (Geneva) for preparing the map. Collec-

Burckhardt € Agost1: Records of South American Peloridiidae

ting permits for the National Parks were pro-

vided by CONAF (Corporación Nacional Fo-

restal) which is gratefully acknowledged. Fo-

llowing persons kindly assisted in the field

work, provided valuable information or offe-

red their kind hospitality: D. Lanfranco L.

(Valdivia), J. Petersen C. (Punta Arenas), M.

Elgueta D. and A. Camousseight (Santiago),

L.E. Peña G. (Santiago), and the staff of the

National Parks of Nahuelbuta, Huerquehue,

Puyehue and Chiloé.

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NOTA CIENTÍFICA

Rev. Chilena Ent.

1991, 19: 77-78

ANOTACIONES SOBRE LA BIOLOGÍA DE PLATYNOCERA VIRESCENS

(F. £e G.) (COLEOPTERA: CERAMBYCIDAE)

Juan ENRIQUE BarRIGA! y Thomas Ficher!

RESUMEN

Se proporcionan datos sobre la biología de Platynocera virescens (F. et G.), y se citan hospederos de esta

especie (algunos de ellos por primera vez), todos pertenecientes al género Chusquea (Poaceae).

ABSTRACT

Information concerning the biology of Platynocera virescens (F. et G.), and its host plants (some of them

noticed for first time), all belonging to Chusquea genus (Poaceae) is provided.

Durante la primavera (1987 y 1989), el

primero de los autores recibió varios cientos

de varas de coligúe (Chusquea coleou Desv.)

para ser utilizados en labores agrícolas

(Maipú, Prov. Santiago). Estas cañas pro-

venían de Cunco (Prov. de Cautín), estando la

mayoría de las cañas atacadas por un insecto

taladrador, que posteriormente verificamos

que se trataba de la especie Platynocera virescens

E” et G., 1859).

Las varas eran de aproximadamente 3 m de

largo, con un diámetro de 1 a 3 cm. En ellas se

encontraban de 1 a 3 larvas distribuidas a lo

largo de la caña.

Durante la primavera se colectó una serie

de imagos de P. virescens revoloteando cerca

de las pilas. Para cenfirmar la procedencia de

estos imagos se procedió a abrir una serie de

cañas, desde donde se obtuvo algunos adultos

que aún no habían emergido y numerosas lar-

vas, con un tamaño homogéneo, entre 1,5 a 2

cm; para estas larvas, por su tamaño, se postu-

ló que serían todas pertenecientes a una mis-

ma generación.

Fue guardado un grupo de coligúes no utl-

lizados, en un lugar cerrado para confirmar

que las larvas pertenecían a esta especie. En la

Facultad de Agronomía, Universidad de Chile, Casi-

lla 1004, Santiago-Chile.

(Recibido: 3 de julio de 1991. Aceptado: 10 de octubre

de 1991.)

temporada siguiente emergió una serie de

adultos de P. virescens, por lo que posterior-

mente se procedió a revisar los coligúes que

habían sido guardados, comprobándose que

ya no existían larvas.

En un instante dado, se encontraban sólo

dos estadios distintos no consecutivos (larvas

de estadio intermedio y adultos), postulándo-

se que su ciclo de vida sería de aproximada-

mente dos años, similar a lo que se ha observa-

do en otras especies (observaciones persona-

les). La oviposición se efectuaría entre sep-

tiembre y noviembre; las larvas emergerían de

los huevos entre octubre y diciembre, siendo

la duración del estado larvario de aproxima-

damente 18 meses; los ¡magos emergerían en-

tre septiembre y noviembre. Puesto que no se

revisó el material durante el invierno, no fue

posible conocer el período de pupación.

Se logró que los adultos copularan y que se

verificara oviposición de huevos fértiles, pero

no fue posible criarlos por no contar con plan-

tas vivas de Chusquea sp., se intentó en vano

que las larvas penetraran en cañas de Bambusa

sp. (especie ornamental introducida, cuyas

cañas son huecas).

Los huevos son pegados con una substancia

cementante, sobre la superficie de la caña des-

cubierta en las distintas especies de quilas

(Chusquea spp.) (así como artificialmente en

Bambusa sp.).

La larva penetra en la caña de Chusquea sp.,

y luego la perfora en su parte central (es una

78 Rev. Chilena Ent. 19, 1991

caña maciza, totalmente leñosa), en forma

descendente, produciendo una galería de

unos 40 cm de largo.

Posteriormente se hicieron prospecciones

en algunas localidades de la zona central, para

ubicar nuevos hospederos de esta especie.

En las localidades de Quintay y Peñuelas

(Prov. Valparaíso, octubre a diciembre, 1989)

se comprobó que P. virescens atacaba plantas

de Chusquea cumingú Nees, en ellas se capturó

larvas y adultos.

En la localidad de Alto de Vilches (Prov.

Talca, noviembre y diciembre, 1989 y 1990) se

comprobó el ataque de esta especie sobre plan-

tas de Chusquea coleou Desv., colectándose lar-

vas y adultos.

En la localidad de Las Trancas (Prov. Nu-

ble, diciembre y enero, 1989 y 1990), se encon-

tró plantas de Chusquea quila Kunth. y Chus-

quea coleou Desv. atacadas.

En las localidades de Lonquimay y “Termas

de Río Blanco (Prov. de Malleco, abril de

1988), se encontró ataque tanto en Chusquea:

quila Kunth. como en Chusquea coleou Desv.

La especie Platynocera virescens había sido

citada anteriormente por Krahmer (1990)

como atacando quilas (Chusquea quila).

La distribución geográfica dada por Cerda

(1986) para esta especie, comprendía las pro-

vincias de Aconcagua, Valparaíso y Ñuble (V y:

VII Regiones) y Krahmer (1990) la cita para

Valdivia (X Región), por lo que con este traba-

jose comprueba una distribución más o menos

continua entre la V y la IX Regiones.

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