SUMARIO

Pág.

FicHeEr, T. Y J. E. BARRIGA. Observaciones preliminares sobre la biología y plantas hospederas de

Neotaphostrachelisi(ColeopteraCerambycidac)t o e cos ocodaaionotn Doa condnEnes Dese neo sea caen S)

FrrTz, M. A. Y A. MARTÍNEZ. Notas sinonímicas de Mutillidae neotropicales (Hymenoptera) ........ 9

CERDA G., M. Nuevos cerambícidos de Chile (Coleoptera: Cerambycida6) coccccccccnnncncononononananonennnananes 13

MORRONE, J. J. Revisión de las especies de Listroderes Schoenherr del grupo curvipes (Coleoptera:

A ios 15

IPINZA R., J.; A. GALANO Y M. A. MORALES. Ambito de hogar de Camponotus morosus Smith,

1838 (Elymenoptera EOL mcidaS) 1 E 23

SÁlz, F. Importancia de la persistencia, en el árbol, de frutos de Acacia caven en la infestación

porRseudopachymennaspuupes (Coleoptera Ba 31

IBARRA V., H. Y L. E. PaRRa. Descripción de los estados preimaginales y aspectos de la

historia natural de Eupithecia horismoides Rindge, 1987 (Lepidoptera: Geometridae), perforador

delpeciolo Id elp an CUE (CURAN CO 35

Cortés, X.; V. R. JEREZ Y R. GALLEGUILLOS. Estudio electroforético en dos especies simpátricas y

smtópicas del leégncrorRrocalus Clark 1865 (Coleoptera: Chrysomelida A 43

ELGUETA D., M. Invertebrados asociados a suelo en bosque de Nothofagus pumilio (Poepp. et

End ikKrasserllRe ción Chileicon especial referencia ais A 49

De SanrIs, L. Y A.E.G. DE SUREDA. Una nueva especie de Strepsiptera de Chile y dos nuevos

registros para la insectofauna de la República Argentina (Embioptera y Thysanoptera) ...ocociccocic.... 61

BARRIGA T., J.E.; T. CURKOVIC $S.; T. FicHET L.; J.L. HENRIQUEZ S. Y J. MacaYa B. Nuevos ante-

cedentes de coleópteros xilófagos y plantas hospederas en Chile, con una recopilación de citas

E O a co O Ra 65

NOTAS

GONZÁLEZ, R. H. El ácaro del tostado de los cítricos, Phyllocoptruta oleivora (Ashmead)

(Extophydas)norataca olivos ae ica o AN 93

ARIAS T., E. Cuarentena vegetal y principales insectos causales de rechazo en productos frescos

para exportación: ¿Chile OOOO is ccoo dd Cd. Doo ada Lota o UR 9S

COMENTARIOS DIBLLOCGRA CO A o a IDO 107

NOTICIAS li a o id A 110

OBITUARIO

JOSÉ V. HERRERA G.. (1913-1992) phase dl. a O Lcd 111

ERNESTO KRAEMER EA O Io roco comen rao donostia oie ni EURO ESO 115

RICHARD. ¡B; DELANDER:. 0 O o a e E 116

INSTRUECIONES. A-LOS AUTOR coc IM Moods ato cado asi os 117

CONTENIDO osccooncónndóocnaeroicnniionisinto nante A O A o dels AS A 119

REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGIA ISSN 0034 - 740X

Publicación oficial de la Sociedad Chilena de Entomología,

Casilla 21132, Santiago (21) - Chile

debe citarse: Rev. Chilena Ent.

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Impreso por

EDISUR

en el mes de julio

de 1993.

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 5-8.

OBSERVACIONES PRELIMINARES SOBRE LA BIOLOGIA Y PLANTAS HOSPEDERAS

DE NEOTAPHOS RACHELIS (COLEOPTERA: CERAMBYCIDAE).

Thomas FicHer! y Juan ENRIQUE BARRIGA!

RESUMEN

Se entregan algunos antecedentes sobre la biología de Neotaphos rachelis Fisher, como también

sus plantas hospederas, las cuales pertenecen al género Ephedra, de la familia Ephedraceae.

ABSTRACT

Information concerning the biology of Neotaphos rachelis Fisher and its host plants in provided.

These plants belong to the Ephedra genus, of the Ephedraceae family.

INTRODUCCION

Fisher (1937) describe Neotaphos rachelis (Fig.

1), a base de dos ejemplares colectados en

Copiapó y en el valle de Elqui. Peña (1974) en-

trega antecedentes biológicos de esta especie, los

cuales se refieren al hallazgo de adultos

sobrevolando Ephedra andina Poepp. ex C. A.

(actualmente E. chilensis Miers) en Freirina y

Huasco, y larvas al interior de ramas de la misma

planta, asignadas presumiblemente a N. rachelis.

Cerda (1986) cita como distribución

geográfica de Neotaphos rachelis, las provincias

de Huasco, Elqui y Santiago. Considerando los

escasos antecedentes sobre esta especie, los ob-

jetivos de este trabajo son determinar las plantas

hospederas y biología de N. rachelis.

MATERIALES Y METODOS

La zona en estudio fue fundamentalmente la

Cordillera de los Andes, entre los 32%” y los 335”

latitud sur; secundariamente, las regiones de

Atacama y Coquimbo, y la Cordillera de la Costa

(33” lat. sur). La ejecución de este trabajo, com-

prendió diversos muestreos efectuados entre los

años 1984 y 1990. En este período se realizaron

diversas recolecciones de material en terreno.

IDepto. Producción Agrícola, Facultad de Cs. Agr. y

For., Universidad de Chile, Casilla 1004, Santiago-Chile.

(Recibido: 1 de agosto de 1991. Aceptado: 12 de agosto

de 1992.)

Figura 1: Adultos de Neotaphos rachelis Fisher.

En la zona norte las prospecciones fueron

esporádicas, realizándose en: Octubre-

Noviembre 1984 y Noviembre 1987; en estos casos

solo se recolectó ramillas y/o raíces de 20 a 40 cm

de largo, y en pequeñas cantidades (10 a 15 partes

de plantas por fecha de muestreo). En cambio en

la zona central debido al mayor acceso que existe

a las localidades escogidas (Farellones, Laguni-

llas, Río Colorado y Cuesta la Dormida), los

muestreos fueron realizados durante los meses de

primavera, otoño e invierno (entre Octubre 1984

y Abril 1990); en esta última época del año,

cuando el tiempo lo permitía. Durante estas

prospecciones se llevaron a laboratorio plantas

enteras de E. chilensis.

6 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Para determinar el ciclo de vida de esta

especie en dicha zona, los arbustos se selecciona-

ron por la presencia de montículos de aserrín a

nivel del suelo, lo que ponía en evidencia la ac-

tividad de una o más larvas. El material recolec-

tado fue llevado a laboratorio, efectuándose

periódicamente (mensualmente) observaciones

del mismo; fueron abiertas 6 a 8 ramillas o raíces

mensualmente, para verificar el estado de desa-

rrollo en que se encontraba el material de crianza.

En terreno también se realizó apertura de rami-

llas al momento de buscar plantas para crianza.

RESULTADOS Y DISCUSION

En la Cordillera de la Costa, como en las pro-

specciones esporádicas efectuadas en las locali-

dades de Copiapó y Huasco, no se hallaron insec-

tos vivos, solamente la presencia de restos de

adultos y larvas vivas.

En la zona de los Andes entre los 32*8' y 335”

S., con una flora un poco menos variada que la

respectiva zona costera, se determinó la presencia

de árboles como Kageneckia angustifolia D. Don

(olivillo”) y plantas arbustivas tales como

Chuquiraga oppositifolia D. Don (”hierba

blanca”) y Tetraglochin alatum Gill. (ex H. et A.)

(”horizonte”).

En cambio en la Cordillera de la Costa (33*

lat. sur) existe una flora arbórea mas abundante,

con Lithrea caustica (Mol.) (”litre”), Quillaja

saponaria Mol. (”quillay”), Nothofagus obliqua

var. macrocarpa (DC.) Reiche (”roble”) entre

otros. En ambas cordilleras es común la presencia

de Ephedra chilensis Miers, cuya distribución va

desde la III a la IX Región; en la II y III Región

existe otra Ephedraceae: Ephedra breana Phil.;

ambas se presumían como hospederas de N. ra-

chelis.

Se hallaron larvas y restos de adultos en

Ephedra breana Phil. en las localidades de Huasco

y Embalse Lautaro (Prov. de Copiapó, II

Región). Las larvas de esta zona no fue posible

criarlas, debido al excesivo tiempo transcurrido

enel transporte de este material, desde los lugares

de recolección hasta el laboratorio, y a las malas

condiciones en que se efectuó dicho transporte;

esto se tradujo en una alta mortalidad de larvas,

la cual fue de casi un 100%. En cambio las larvas

obtenidas de E. chilensis en la Cordillera de los

Andes, Regiones V y Metropolitana, una vez

colectadas fueron rápidamente llevadas a labora-

torio donde se procedió a criarlas.

En dichas plantas se observó en terreno que

la oviposición se produjo en ramillas vivas sobre

la corteza y en grietas de la misma. Una vez que

eclosiona la larva, horada el interior de la rama,

dirigiéndose hacia la raíz de la planta; esta galería

es bastante variable en longitud y grosor. En

general, por cada ramilla se encuentra sólo una

larva, pero ocasionalmente se puede encontrar

más de una larva en ramas o raíces de diámetro

superior a 3 cm (Fig. 2). Entre la gran

ramificación que presenta este arbusto, fue

posible encontrar hasta más de diez ejemplares

por planta.

Figura 2: Presencia de larva de Neotaphos rachelis junto

a varias galerías en E. chilensis.

A medida que la larva aumenta de tamaño, llega

a formar una galería que ocupa prácticamente

todo el interior de la raíz: finalmente la galería

queda de un diámetro de 0,5 a 0,7 cm y de 15 a

30 cm de longitud. Luego la larva asciende desde

la raíz hacia la parte aérea de la planta, en donde

horada una salida en la madera en forma perpen-

dicular a la galería, dejando parte de la corteza sin

tocar, de esta forma queda obstruída tem-

poralmente la salida; más tarde el adulto puede

salir perforando este tapón de corteza. Esta salida

por lo general se encontró entre 2 y 7 cm sobre el

suelo.

En este último trecho de la galería, la larva

Fichet y Barriga: Aspectos biológicos de Neotaphos rachelis 7

Meses JS NEMMJSNEMMJSNEMMJSNEMM

Estados

- Imago en cámara

- Imago emergido

- Huevo

- Larva

- Pupa

Figura 3: Ciclo biológico de N. rachelis Fisher en zona cordillerana de la Región Metropolitana (Las letras

representan los meses del año, cada dos meses).

forma una cámara pupal donde permanece al

estado de larva sin alimentarse durante dos a tres

meses (mediados de Septiembre a mediados de

Noviembre), para luego pupar y más adelante

convertirse en adulto. El adulto permanece en el

interior de la galería, durante todo el otoño e

invierno, para luego emerger en la primavera

siguiente.

Con los resultados obtenidos, se estima que

el ciclo completo de Neotaphos rachelis duraría

aproximadamente 36 meses (Fig. 3).

Al criar los ejemplares se determinó que es

un insecto bastante bien adaptado a las condi-

ciones del medio ambiente reinante en la alta

cordillera o en el desierto, puesto que es posible

criarlo bajo condiciones tan adversas como bajos

niveles de humedad, sin que por ello se vea afec-

tado el desarrollo de las larvas y/o la emergencia

de adultos, a diferencia de las crianzas efectuadas

de otras especies de Cerambycidae (Fichet y

Barriga, 1990)

El único parásito que fue detectado en la

crianza es una especie de Sarcophagidae

(Diptera) no identificado (Barriga, 1990).

Hasta este momento no se conocían con

certeza los hospederos de esta especie y sólo

existían sospechas de que se podría tratar de

Ephedra chilensis: como resultado de este estudio

se confirma esta planta como hospedera de

Neotaphos rachelis junto a Ephedra breana de la

cual no se criaron adultos, pero donde se encon-

traron imagos muertos en sus cámaras pupales,

prácticamente intactos.

La distribución de E. chilensis en Chile es

bastante amplia, desde la MI Región por el norte,

hasta la IX Región por el sur, comprendiendo su

distribución desde la cordillera de los Andes hasta

la costa (Fig. 4); E. breana en cambio se encuentra

Figura 4: Distribución geográfica de Neotaphos rachelis

Fisher (círculos) y de los hospederos conocidos

(achurado):

E. breana Phil.

SJ]

E. chilensis Miers SS

8 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

distribuida en la II y INTI Regiones. La gran

distribución geográfica de estas especies

hospedadoras de N. rachelis, permiten suponer

que la distribución de este Cerambycidae podría

ser más amplia que la actualmente conocida.

Se observó una gran variación del patrón de

coloración como también de tamaño en los adul-

tos, lo cual no guarda relación con la planta donde

se criaron; es así que desde una misma planta se

obtuvieron ejemplares que medían desde 1 hasta

2,5 cm de longitud, y de colores claros hasta ob-

scuros. La variación de colores va desde ejem-

plares totalmente negros, pasando por ejemplares

pardo claro hasta individuos con los 4/5 basales

de los élitros de color rojizo, como también las

patas, las cuales son del mismo color rojo desde

la tibia hasta las uñas, y el resto del cuerpo es de

color oscuro; esta variación cromática tampoco

está relacionada con el sexo de los ejemplares.

Material estudiado (por provincias de Norte a

Sur)

Criados de material del área de estudio:

Copiapó: Embalse Lautaro, X-1984, leg. J. E.

Barriga, ex cámara pupal, 1 ej. muerto y larvas, ex

E. breana.

Huasco: Huasco, XI-1984 y X-1987, leg. J. E. Ba-

rriga, larvas y restos de adultos, ex E. breana.

Elqui: Llano de la Higuera, X-1987, leg. J. E.

Barriga, larvas y restos de adultos; Choros Bajos,

XI - 1989, leg. J. E. Barriga, ex cámara pupal, 3

ej.; Embalse La Laguna, XI-1989, leg J. E. Ba-

rriga, larvas y restos de adultos, todos ex E. chilen-

sis.

Chacabuco: Cuesta la Dormida, X-1987, leg. J. E.

Barriga, larvas y restos de adultos, ex E. chilensis.

Santiago: Farellones: 23-oct-1988 leg. T. Fichet,

10 ej. ex cámara pupal. 28-oct-1988, leg. T. Fichet

4 ej. ex cámara pupal. 1-nov-1988, leg. T. Curkovic

1 ej. ex cámara pupal. 5-nov-1988 leg. T. Fichet 2

ej. ex cámara pupal. 2-nov -1988, leg. J. E. Ba-

rriga, 3 ej. ex cámara pupal. 26-marzo-1989, leg J.

E. Barriga, 16 ej. ex cámara pupal. 15-abr-1989

leg. T. Fichet 4 ej. ex cámara pupal. 2-nov-1989

leg. T. Fichet 11 ej. ex cámara pupal, todos los

ejemplares ex E. chilensis. Reserva Nacional

Yerba Loca, 30-mar-1989 leg. T. Fichet 1 ej. ex

cámara pupal, ex E. chilensis.

Cordillera: Lagunillas, 25-marzo-1989, leg. J. E.

Barriga, 28 ej. ex cámara pupal, ex E. chilensis.

Río Colorado, 15-sept-1988, leg J. E. Barriga, 5 ej.

ex cámara pupal, 1-oct-1988, leg J. E. Barriga, 3

ej. ex cámara pupal, todos los ejemplares ex E.

chilensis.

Maipo: Rungue, nov-1989, leg J. E. Barriga, 1 ej.

ex cámara pupal, larvas y restos de adultos, ex E.

chilensis.

Adultos colectados:

Santiago: Farellones, 1-nov-1988, leg. J. L.

Henríquez sobre Ephedra chilensis Miers. 1 ej.

Cordillera: San Gabriel, 2-nov-1985 leg. O.

Rodríguez 1 ej.; Río Colorado, 16-nov-1987, leg.

R. Ramírez 1 ej.

Parte del material se encuentra depositado en

las colecciones del Museo Nacional de Historia

Natural, Facultad de Ciencias Agrarias y Fores-

tales de la Universidad de Chile (Santiago) y de

los autores.

AGRADECIMIENTOS

Los autores expresan sus agradecimientos a don

Jorge Macaya por su asesoría botánica, y a don

Mario Elgueta por la lectura y sugerencias hechas

al manuscrito.

LITERATURA CITADA

BARRIGA, J. E. 1990. Parásitos y depredores de larvas de

Cerambycidae y Buprestidae (Coleoptera) de

Chile. Rev. Chilena Ent., 18: 57-59.

CERDA, M. 1986. Lista sistemática de los cerambicidos

chilenos (Coleoptera. Cerambycidae). Rev.

Chilena Ent., 14: 29-39.

FicHer, T. y BARRIGA, J. E. 1990. Observaciones

biológicas sobre Holopterus annulicomis F. Phil-

ippi, 1859 (Coleoptera: Cerambycidae). Rev.

Chilena Ent., 18: 61-65.

Fisher, W.S. 1937. A new Cerambycid beetle from

Chile, Rev. Chilena Hist. Nat., 40: 324-326.

Pera, L. 1974. Algunas observaciones sobre especies

poco conocidas de Cerambycidae (Coleoptera)

(ID) (Nuevas distribuciones, sinonimias, etc.). Bol.

Soc. Biol. Concepción, 47: 303-306.

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 9-11.

NOTAS SINONIMICAS DE MUTILLIDAE NEOTROPICALES (HYMENOPTERA)

MANFREDO A. Frrrz! y ANTONIO MARTÍNEZ!

RESUMEN

Se proponen diversas sinonimias de especies de Mutillidae. Darditilla ameliae chera Casal = D.

ameliae ameliae Casal. Atillum dubium Casal = A. venustum Mickel. Reedomutilla fritzi Casal =

R. dureti Casal. Anomophotopsis lugens (Lynch A.) = A. cometa cometa (Gerst.), (COMB. NOV.).

Shinctopsis cometa rubrocalva (Burm.) y $. matrera Casal son transferidas al género Anomopho-

topsis.

ABSTRACT

New synonyms of several Mutillidae species are proposed. Darditilla ameliae chera Casal = D.

ameliae ameliae Casal. Atillum dubium Casal = A. venustum Mickel. Reedomutilla fritzi Casal =

R. dureti Casal. Anomophotopsis lugens (Lynch A.) = A. cometa cometa (Gerst.), (COMB. NOV.).

Shinctopsis cometa rubrocalva (Burm.) y $. matrera Casal are transferred to the genus Anomo-

photopsis.

DARDITILLA AMELIAE CASAL, 1968

Casal (1968 a) describe Darditilla ameliae, espe-

cie que a su vez divide en dos subespecies: a.

ameliae s.s. de Formosa, Misiones y Chaco y

ameliae chera de Salta, diferenciándolas por:

“máculas pubescentes del 2” tergito separadas

entre si por una distancia mayor que el diámetro

de una de ellas. Faja caudal del 2? tergito con una

mácula mesal de pilosidad blanquecina (Fig. de

(R.A.: Chaco, Formosa, MISIONES... coccion...

naaa non naiatas ameliae ameliae sp. et ssp. n.

máculas pubescentes del 2” tergito separadas

entre si por una distancia subigual al diámetro de

una de ellas; faja caudal del 2” tergito, salvo en el

extremo lateral, con pilosidad negra (R.A.

A do ,

A ds ameliae chera sp. et ssp. n.”

Del material de Salta que hemos visto, con-

statamos que la mayor parte de los ejemplares

Investigadores del CONICET. Instituto de Investiga-

ciones Entomológicas Salta INESALT, Casilla de Correo 3,

4405 Rosario de Lerma, Salta-Argentina.

(Recibido: 20 de septiembre de 1991. Aceptado: 28 de

octubre de 1992)

tiene una mácula mesal de pilosidad blanca en el

2” tergo y algunos no. La distancia mayor o menor

que el diámetro de una de ellas que hay entre las

máculas del 2”, débese a que estas varían de

tamaño y las más pequeñas, al estar ubicadas más

afuera, dejan un espacio mayor entre sí. Creemos

que esta subespecies no están justificadas y el

único ejemplar que tuvo Casal para describir la

ssp. chera es un extremo de variabilidad

intraespecífico. Por consiguiente la sinonimi-

zamos con la nominotípica, quedando la sinon-

imia de la especie como sigue:

Darditilla ameliae ameliae Casal, 1968 a: 85, 90.

Holotipo 2. ARGENTINA: Formosa. (AMNH).

Darditilla ameliae chera Casal, 1968 a: 85, 91.

Holotipo 9. ARGENTINA: Salta (AMNH).

NOV. SYN.

ATILLUM VENUSTUM MICKEL, 1943

Casal (1963), describe el Alotipo de Atillum

stygium Mickel, y lo finaliza con la siguiente frase:

“En las localidades arriba referidas fueron halla-

dos machos y hembras juntos, siendo esta la única

especie de Atillum presente en las mismas”. Se

refiere a Gral. Roca, Lamarque y Cnel. Gómez

(Río Negro) y Santa Isabel (La Pampa).

10 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

La fauna mutilidológica neotropical se ex-

tiende hasta las provincias de Río Negro y Chubut

como extremo límite austral de distribución hasta

ahora. En realidad, son dos las especies de Aftil-

lum presentes allí: stygium Mickel y venustum

Mickel. Las mismas razones que llevan a Casal a

asociar el macho con la hembra de stygium, nos

mueven a asociar la hembra de venustum Mickel

con dubium Casal, además de una buena corres-

pondencia estructural, a la vista de 12 dy 109, por

lo que proponemos la siguiente sinonimia:

Atillum venustum Mickel, 1943: 194. Holotipo $.

ARGENTINA: Patagonia. (MHNP).

Atillum dubium Casal, 1963: 86. Holotipo gd.

ARGENTINA: Buenos Aires (AMNH). NOV.

SYN.

En relación con la mácula anaranjada caudo-

mesal del 2” tergo de los machos, Casal omite

mencionar que esta es variable, estando en

algunos ejemplares limitada a unos pocos pelos,

siendo en otros muy extendida látero cau-

dalmente, con pigmentación más pálida en

algunos casos.

REEDOMUTILLA DURETI CASAL, 1968

Casal (1968 b) describe sobre un macho una

especie nueva que denomina Reedomutilla fritzi.

A continuación, en base a hembras, otra con el

nombre de R. dureti. Ambas provienen de la

misma localidad: ARGENTINA, Jujuy, Mina

Aguilar, 4000 mts. y de la misma fecha, IV. 1950.

Si hemos de considerar como válido el género

Suareztilla Casal, el género Reedomutilla tenía

solo tres especies: gayi (Spin.), de Chile, conocida

de macho y hembra, heraldica (Smith) y pubescens

(Smith), de Argentina. Como es sabido, heraldica

y pubescens son sospechosas de ser macho y

hembra respectivamente de la misma especie. Al

agregarle Casal dos nuevas, el género contaría

con cinco especies. Pero fritzi Casal y dureti Casal,

no pasan de ser los sexos de una misma especie.

Consideramos inaceptables describir macho y

hembra como distintos en un género tan poco

numeroso, cuando la asociación de los sexos es

tan evidente, por muy conservador que se desee

ser. Por consiguiente la sinonimia queda como

sigue:

Reedomutilla dureti Casal, 1968b:80. Holotipo $.

ARGENTINA, Jujuy. (AMNH).

Reedomutilla fritzi Casal, 1968b:80. Holotipo d.

ARGENTINA, Jujuy (AMNH). NOV. SYN.

ANOMOPHOTOPSIS COMETA COMETA

(GERSTAECKER, 1874) COMB. NOV.

Mutilla cometa Gerstaecker, 1874:61. Holotipo 9.

ARGENTINA: Entre Ríos, Parané (Mus.

Halens).

Mutilla viduata Lynch A., 1878:202. (nec Pallas

1773). Holotipod. ARGENTINA: Buenos Aires.

(Perdido).

Mutilla lugens Lynch A., 1878:213. gd. NOV. SYN.

Anomophotosis lugens: Schuster, 1949:107.

Sphinctopsis cometa cometa: Casal, 1973:17.

Lynch (1874) describe un macho como Mu-

tilla viduata, al que en el mismo trabajo como

apéndice, cambia el nombre por Mutilla lugens, ya

que el primero estaba preocupado por Pallas en

1773 para una especie europea. Aclara Lynch que:

““Capturé el macho en momentos en que se entreg-

aba al acto preparatorio de la generación: la

hembra logró escaparse, ocultándose de tal

manera, que me fue imposible encontrarla y

únicamente pude aprovecharme del macho, único

ejemplar de la especie que he obtenido hasta

hoy.”

Sin embargo, cree Lynch haber reconocido

en la hembra escapada a la Mutilla cometa Gerst.,

y “el nombre que le doy a este macho no debe ser

sino provisorio, hasta tanto se compruebe su

correspondencia con alguna de las especie que

habitan el partido.”

Casal (1973) se inclina a pensar que Lynch

estaba en lo cierto, pero al no haber una clara

evidencia de correcta asociación de los sexos, opta

por tratar lugens en el género Anomophotopsis y

a cometa en el género Sphinctopsis. Aclara, sin

embargo, que de confirmarse lo supuesto por

Lynch, “las especies aquí tratadas deben pasar a

Anomophotopsis Schuster, y lugens, por su geone-

mia, sería el macho de cometa.

El hecho de haber obtenido en una trampa

Malaise un macho de Anomophotopsis lugens

(Lynch) y una hembra de Sphinctopsis cometa

Fritz y Martínez: Notas sinonímicas de Mutillidae neotropicales ll

cometa (Gerst.) nos da cierta seguridad de la

correcta asociación de los sexos. No es usual

capturar hembras de Mutillidae en trampas Mal-

ise, y debemos suponer que cayeron en ella

cuando se encontraban “in copula”. Eran,

además, los dos únicos ejemplares de Mutillidae

capturados en la trampa, ubicada en la localidad

de Moreno, provincia de Buenos Aires, lo que

viene a confirmar lo sospechado por Lynch.

Se incluyen además en Anomophotopsis:

Sphinctopsis matrera Casal, 1973 = Anomopho-

topsis matrera (Casal) COMB. NOV. y Mutilla

rubrocalva Burmeister = Sphinctopsis cometa

rubrocalva (Burmeister) = Anomophotopsis

cometa rubrocalva (Burmeister). COMB. NOV.

ABREVIATURAS

AMNH - American Museum of Natural History.

MHNP - Muséum d'Histoire Naturelle, Paris.

LITERATURA CITADA

BURMEISTER, H., 1875. Mutilliae Argentinae. Bol. Acad.

Nac. Cienc. Córdoba, 1: 461-502

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Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 13-14.

NUEVOS CERAMBICIDOS DE CHILE (COLEOPTERA: CERAMBYCIDAE)

MicuEL CERDA G.!

RESUMEN

Se describen dos nuevas especies, de los géneros Callisphyris Newman (auriventris n. sp.) y Til-

lomorpha Blanchard (roitmani n. sp.).

ABSTRACT

Two new species of the genera Callisphyris Newman (auriventris n. sp.) and Tillomorpha Blanchard

(roitmanti n. sp.) from Chile, are described in this paper.

INTRODUCCION

El estudio de cerambicidos facilitados por insti-

tuciones y particulares, ha hecho posible la

descripción de una nueva especie del género Cal-

lisphyris Newman, con la cual se aumenta a 14 el

número de especies conocidas, y una nueva espe-

cie del género Tillomorpha Blanchard, previa-

mente integrado por 7. lineoligera Blanchard y T.

myrmicaria F. £ G.

DESCRIPCIONES

CALLISPHYRIS AURIVENTERIS n. sp.

Holotipo macho: color general negro opaco;

antenas con los primeros cuatro antenitos y la

base del quinto, amarillo-rojizo; élitros y patas de

color amarillo leonado, con los tarsos negruzcos.

Pilosidad negra y larga, mezclada con pelos

rojizos en el pronoto, prosterno y metasterno;

élitros cubiertos de pubescencia dorada sedosa;

abdomen totalmente cubierto por pubescencia

rojiza, corta y tendida; patas anteriores y medias

con pelos dorados erguidos; las posteriores con

pilosidad larga y densa, en fémur y tibia, de color

amarillo leonado y con un anillo ancho de pelos

negros en la mitad basal de los fémures; tarsos con

pubescencia negruzca.

ISociedad Chilena de Entomología, Casilla 21132,

Santiago-Chile.

(Recibido: 15 de octubre de 1991. Aceptado: 29 de

octubre de 1991).

Cabeza como en C. macropus Newman; an-

tenas alcanzan el 4% segmento abdominal con el

ápice del antenito 11, escapo piriforme, antenitos

6 al 10 ligeramente angulosos en su borde externo,

el 11 con ápice aguzado.

Protórax más ancho que largo, con los bordes

subparalelos; pronoto algo nudoso en el centro y

unituberculado en los costados.

Proceso prosternal muy estrecho y brus-

camente arqueado hacia adentro; proceso mesos-

ternal ancho, paralelo, inclinado hacia adentro y

fuertemente escotado en su extremo; proceso

metasternal hinchado y escotado en su borde

posterior. Abdomen arqueado en la base y dilat-

ado hacia el extremo.

Patas como en C. macropus Newman.

Largo total: 24 mm; ancho humeral: 5,2 mm.

Hembra de igual coloración que el macho, de

mayor tamaño y con antenas más cortas, las cuales

sólo alcanzan con su ápice el 2? segmento abdomi-

nal. Largo total: 26 mm; ancho humeral: 7 mm.

Material examinado: Holotipo macho. Prov. de

Valdivia, Valdivia, 17.X11.1983, E. Kramer coll.

Paratipos: 1 macho de Valdivia, 28.X11.1984, E.

Krahmer coll.; 1 hembra de igual localidad,

16.1.1970, S. Roitman coll.; 1 hembra de Prov. de

Osorno, Pichil, I. 1965, J. Moroni coll.

Depósito del material tipo: Holotipo macho en el

Museo Nacional de Historia Natural (Santiago-

Chile), 1 paratipo macho en el Instituto de

Entomología de la Universidad Metropolitana de

Ciencias de la Educación (Santiago-Chile), 1

paratipo hembra en la colección particular de

Sergio Roitman y un paratipo hembra en la

14 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

colección del autor.

Comentario: especie afín a C. macropus Newman

(1840), de la cual se diferencia por la coloración,

pilosidad de las patas posteriores, la cual es más

larga, y por el mayor tamaño de las antenas.

TILLOMORPHA ROITMANT hn. sp.

Holotipo macho: color negro; antenas pardo

rojizas; élitros negros, de aspecto aterciopelado,

en su mitad anterior y amarillo dorado en su mitad

posterior, con una línea transversal por detrás del

escutelo, sin alcanzar los bordes externos, for-

mada por pilosidad dorada y otra oblícua que

limita la coloración de la mitad posterior. Pilosi-

dad general blanquecina, escasa; con pubescencia

plateada en los costados del prosterno, meso y

metasterno.

Cabeza, protórax, élitros, faz inferior y patas

como en 7. lineoligera Blanchard.

Largo total: 4,5 mm; ancho humeral: 1 mm.

Hembra de mayor tamaño y con antenas más

cortas. Largo total: 6 mm; ancho humeral: 1,5

mm.

Material examinado: Holotipo macho, Prov. de

Chacabuco, Til-Til, Caleu, 1.150 msm, 31.X.1987,

S. Roitman coll. Paratipos: 1 hembra con los mis-

mos datos del Holotipo; 1 macho de igual locali-

dad, 22.1X.1990, M. Cerda coll.; 1 macho de igual

localidad, 11.X.1987, M. Cerda coll.; 1 macho de

igual localidad X1.1985, L. Peña coll.; 1 macho,

Prov. Chacabuco, Rungue, 23.X.1971, J. Apablaza

coll.; 1 macho de igual localidad, 7.X1.1969, D.

Correa coll.; 1 hembra de Prov. de Santiago,

22.1X.1987; 1 hembra de Prov. de Curicó, El

Coigo, X.1960, M. Rivera coll.; 1 macho y 1

hembra de Prov. de Quillota, La Dormida,

16.X1.1982, L. Peña coll.

Depósito del material tipo: Holotipo y 1 paratipo

hembra en el Museo Nacional de Historia Natural

(Santiago-Chile). Los paratipos en el Instituto de

Entomología de la Universidad Metropolitana de

Ciencias de la Educación (Santiago-Chile) y enlas

colecciones privadas de Luis Peña G., Cristián

Pérez de Arce, Sergio Roitman y del autor.

Comentario: esta especie se diferencia de T. line-

oligera Blanchard (1851), por la coloración de las

antenas, que en esta última son de color testáceo

rojizo con escapo negruzco, el color amarillo

dorado de la mitad posterior de los élitros y por

las manchas de color plateado en la faz ventral.

Los caracteres que la separan de la especie antes

mencionada, son bastante estables y no se han

encontrado ejemplares intermedios. Los ejem-

plares han sido colectados mayoritariamente en

áreas de la Cordillera de la Costa; el ejemplar

designado como Holotipo y una hembra, fueron

colectados sobre Maytenus boaria Mol.

Dedico esta especie al Sr. Sergio Roitman,

por su valiosa colaboración con material

entomológico.

LITERATURA CITADA

BLANcHARD, C. E. 1851. /n: C. Gay (ed.), Historia Física

y Política de Chile, Zoología, 5: 451-483. Imprenta

de Maulde et Renou, París.

Newman, E. 1840. Entomological notes. Entomologist,

1: 1-2.

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 15-21.

REVISION DE LAS ESPECIES DE L/STRODERES SCHOENHERR DEL

GRUPO CURVIPES (COLEOPTERA: CURCULIONIDAE)

JuAn J. MORRONE!

RESUMEN

El grupo curvipes del género Listroderes posee tres especies endémicas de Chile central: L. curvi-

pes Germain, L. fallar Germain y L. tuberculifer Blanchard. Se define el grupo, se presentan re-

descripciones e ilustraciones de sus especies y se provee una clave para su identificación. El grupo

curvipes se distingue de otros grupos de Listroderes por los élitros con tubérculos anteapicales

grandes, comprimidos, subcuadrados. Las hembras poseen dos tubérculos apicales en los élitros,

dos tubérculos pequeños en el esternito abdominal 5 y hemiesternitos cortos, compactos y con

papilas apicales. El análisis cladístico muestra que L. curvipes es la especie hermana del par £.

fallax- L. tuberculifer.

ABSTRACT

The Listroderes curvipes species group comprises three species endemic to central Chile: £.

curvipes Germain, L. fallar Germain, and L. tuberculifer Blanchard. The group is described,

redescriptions and illustrations of its species are presented, and a key for identifying them is

provided. The curvipes group is distinguished from other Listroderes groups by the elytra with

large, compressed, subquadrate, anteapical tubercles. Females bear two apical tubercles in the

elytra, two small tubercles on abdominal sternite 5, and short, compact, hemisternites having apical

papillae. The cladistic analysis shows that L. curvipes is the sister species to the pair L. fallax- L.

tuberculifer.

INTRODUCCION

Schoenherr (1826) describió el género Listroderes

sobre la base de la especie £L. costirostris. Luego

de estudios que restringieron la composición del

género (Morrone, 1992 a, b, en prensa a, b) éste

cuenta con treinta y cinco especies, distribuidas en

la Argentina, Chile, Uruguay, Bolivia, Paraguay y

sur del Brasil, algunas de ellas introducidas ac-

cidentalmente en América del Norte, Australia,

Nueva Zelanda, Japón y España.

Las especies L. curvipes Germain, L. fallax

Germain y L. tuberculifer Blanchard constituyen

un grupo monofilético, endémico del centro de

Chile. Los objetivos de esta contribución son

proveer la diagnosis del grupo curvipes, redes-

cribir e ilustrar sus especies, brindar una clave

IDepartamento Científico de Entomología y Laborato-

rio de Sistemática y Biología Evolutiva (LASBE), Museo de

La Plata, Paseo del Bosque, 1900 La Plata, Argentina.

(Recibido: 20 de febrero de 1992. Aceptado: 27 de agosto

de 1992).

para su identificación y analizar sus relaciones

filogenéticas.

MATERIAL Y METODOS

El material examinado procede de las colecciones

depositadas en las siguientes instituciones:

BMNH: The Natural History Museum, Londres,

Gran Bretaña (Christopher Lyal).

CWOB: Charles W. O'Brien, colección particular,

Tallahassee, USA (Charles W. O'Brien).

HAHC: Henry F. y Anne T. Howden, colección

particular, Ottawa, Canadá (Anne T. Howden).

MHNS: Museo Nacional de Historia Natural,

Santiago, Chile (Mario Elgueta).

MNHN: Museum National d'Histoire Naturelle,

Paris, Francia (Heléne Perrin).

Los métodos de disección y preparación de

los genitalia fueron los usuales. Los términos

16 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

relacionados con las partes de la espermateca se

detallan en Dobzhansky (1924). Las medidas se

tomaron con un ocular micrométrico incorporado

a un microscopio estereoscópico. Los dibujos se

realizaron con una cámara clara adaptada a dicho

microscopio. Los datos de los ejemplares tipo se

transcriben literalmente, separando entre

paréntesis los de cada uno de los rótulos que

portan los mismos.

TABLA 1

SERIE DE TRANSFORMACION DE LAS

ESPECIES DE LISTRODERES DEL

GRUPO CURVIPES. CARACTERES

PLESIOMORFICOS = O

Y APOMORFICOS = 1 Y 2

1-Carenas laterales del rostro: poco marcadas (0);

marcadas (1).

2-Revestimiento del rostro: setas (0); escamas

setiformes (1).

3-Surco longitudinal del protórax: ausente (0);

presente (1).

4-Interestrías elitrales: planas (0); levemente

convexas (1).

5-Tubérculos anteapicales de las hembras: ausen-

tes (0); presentes, rectos (1); presentes,

aguzados (2).

6-Tubérculos apicales de las hembras: ausentes

(0); presentes, pequeños (1); presentes,

prominentes (2).

7-Pliegues transversales en los élitros: ausentes

(0); presentes (1).

8-Protibias: rectas (0); curvadas hacia adentro (1).

9-Número de espolones en las metatibias: 2 (0);

(Al) )

10-Tubérculos en esternito abdominal 5 de las

hembras: ausentes (0); presentes (1).

11-Apice del aedeagus: estrechado (0); an-

chamente redondeado (1).

12-Longitud relativa de los apodemas del

aedeagus: más cortos que el tubo (0); más largos

que el tubo (1).

13-Hemiesternitos: alargados, sin papilas apicales

(0); cortos, compactos, con papilas apicales (1).

Los métodos cladísticos se detallan en Nelson é

Platnick (1981). La generalidad de los caracteres

se determinó con el método de comparación con

el grupo externo (Watrous € Wheeler, 1981),

empleando las especies de Listroderes del grupo

robustus. La lista de series de transformación y

caracteres se presenta en la Tabla 1 y la matriz de

datos (especies x caracteres) en la Tabla 2. Dado

el reducido número de especies, el análisis se llevó

a cabo en forma manual.

RESULTADOS

Las especies del grupo curvipes se distinguen de

otras especies de Listroderes por poseer en los

élitros un tubérculo anteapical grande, compri-

mido, subcuadrado y con su borde posterior per-

pendicular al eje longitudinal de cuerpo. Las

hembras poseen dos tubérculos apicales en los

élitros, dos pequeños tubérculos en el esternito

abdominal 5 y hemiesternitos cortos, compactos,

con papilas apicales y sin estilos.

Las tres especies del grupo curvipes además

comparten los siguientes caracteres: escamas

subcirculares, finamente estriadas, doradas; ca-

rena ventral de la escroba sin diente; rostro con

tres carenas dorsales; escapo antenal largo

(sobrepasa el margen posterior del ojo cuando

reposa en la escroba); protórax con lóbulos pos-

toculares poco desarrollados; protibias y mesoti-

bias con un espolón; aedeagus levemente

asimétrico, delgado en vista lateral, curvado en el

tercio apical, apodemas más largos que el tubo; y

esternito 8 de la hembra con apodema largo y

lámina subcircular.

Ubicación sistemática. El grupo curvipes se

asigna al género Listroderes por los siguientes

caracteres: frente con fovea; rostro más corto que

el protórax; epistoma no sobresaliente; antenito 1

del funículo más largo que el 2, antenitos 3-6

subglobosos, clava ovalada; protórax transversal,

ensanchado en el tercio anterior, con ápice recto,

base curva hacia adelante, lóbulos postoculares

presentes; sutura metepisternal presente; es-

cutelo visible; élitros ovalados, convexos, más

anchos que el protórax, hombros redondeados,

tubérculo anteapical presente; tibias dentadas,

mucronadas y con espolones; tarsito 3 bilobado;

aedeagus con el tercio apical no engrosado, teg-

men sin parámeros; y espermateca con nodulus y

ramus desarrollados.

Distribución geográfica. Las especies del grupo

curvipes se hallan distribuidas en el centro de

Chile (Fig. 13), distribución que corresponde a las

regiones Santiaguina y Valdiviana norte de

Morrone: Revisión de Listroderes grupo curvipes 17

TABLA 2

MATRIZ DE DATOS (ESPECIES X CARACTERES) DE LAS ESPECIES DEL GRUPO

CURVIPES. CARACTERES PLESIOMORFICOS =

1 2 3 4 5 6

grupo robustus 0 0 0 0 0 0

L. curvipes 0 0 0 0 1 1

L. fallax 1 1 1 1 1 2

L. tuberculifer 0 1 1 Tr 1

O'Brien (1971).

9 =

E 2 3

S En 5

3 E E

Gi J =

5.2

grupo robustus

Figura 1: Cladograma de las especies de Listroderes del

grupo curvipes. Cuadrados negros: apomorfías; =:

paralelismos.

Relaciones filogenéticas. El cladograma (Fig. 1)

muestra las relaciones filogenéticas de las espe-

cies de Listroderes del grupo curvipes. En la Tabla

1 se detallan las series de transformación y sus

caracteres.

Clave para la identificación de las especies del

grupo curvipes

O Y APOMORFICOS = 1 Y 2.

7 8 9 1010 bso 120013

Cr? O PRO

SS DM

E OS

eh no Oo

O >

h ba 0

1. Protórax con surco longitudinal medio.

Interestrías elitrales levamente convexas.

Protibias rectas. Apice del aedeagus an-

chamente redondeado ....ccocinnconccncncccnnonnnccn. 2

1- Protórax sin surco longitudinal medio.

Interestrías elitrales planas. Protibias cur-

vadas hacia adentro. Apice del aedeagus

estrechado naaa el 10 Rad, A

AA SSA E. curvipes Goran

2. Carenas laterales del rostro marcadas. Hem-

bras con tubérculos anteapicales rectos y

tubérculos apicales prominentes. Metatibias

confunespolón ME CARROS. ALETA

LIA A o E. fallax CA

2- Carenas laterales del rostro poco marcadas.

Hembras con tubérculos anteapicales

aguzados y tubérculos apicales pequeños.

Metatibias con dos espolones ........coco.......

E L. tuberculifer Blanchard

LISTRODERES CURVIPES GERMAIN

(A ey JUL MZ)

Listroderes curvipes Germain 1895:55, 1911:205

(lista); Schenkling $ Marshall 1931:7 (cat.);

Blackwelder 1947:813 (lista); Kuschel 1952:131;

Wibmer £ O”Brien 1986:113 (lista); Elgueta

1988:130 (biog.).

Redescripción. Macho. Rostro 1,2 veces más

largo que ancho, 0,5 veces el largo del protórax,

carenas laterales poco marcadas, revestido con

setas amarillentas con reflejos cobrizos. Antenas

con antenito 1 del funículo 1,8 veces más largo que

el 2. Protórax 0,8 veces el largo en el ancho,

18 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

revestido con escamas imbricadas y setas amar-

illentas con reflejos cobrizos. Elitros 1,6 veces

más largos que anchos, interestrías planas; reves-

tidos con escamas imbricadas y setas castañas y

blanquecinas; patrón de coloración con mancha

amarillenta en el tercio posterior. Patas con

protibias curvadas hacia adentro, metatibias con

un espolón. Aedeagus (Figs. 2, 3) débilmente

curvado en el tercio apical, con ápice estrechado.

Hembra. Tubérculos anteapicales rectos y

tubérculos apicales pequeños. Esternito 8 como

en la Fig. 8. Hemiesternitos como en la Fig. 11.

Espermateca como en la Fig. 12.

Longitud total (protórax + élitros) 5,2-7,5 mm.

Material tipo. Lectotipo $: (Pocillos/ C. Stolp)

(158) (holotype o/curvipes/ Germain) (curvipes/

P. G.) (Listroderes/ curvipes/ Germain/ det. G.

Kuschel/ 1981) (Lectotipo 9 / Listroderes curvi-

pes/ Morrone des. 1992) (MHNS). Un paralec-

totipo 2 (MHNS) con los mismos datos.

Otros materiales examinados. CHILE.

Valparaíso: Colliguay, 18-1X-1970, Sielfeld col., 1

(MANS), 30/31-X-1970, 1 (MHNS). Santiago:

Aculeo, 20-XI-1964, G. Monsalve col., 1

(MHNS); Apoquindo, VII-1953, Peña col., 7

(MHNS); El monte, 28-VII-1976, Beéche col., 1

(MHNS), 28- VIII-1976, Beéche col., 2 (MHNS);

La Florida, XII-1970, 1 (MHNS); 20 km W

Rungue, 26-X1-1967, L. £ C. W. O'Brien col., 2

(CWOB). Sin localidad precisa: 2 (MHNS), 1

(BMNH).

LISTRODERES FALLAX (GERMAIN)

(Figs. 4, S, 9)

Listroderes fallax Germain 1895:59, 1911:205

(lista); Schenkling $ Marshall 1931:7 (cat.);

Blackwelder 1947:813 (lista); Wibmer 4 O” Brien

1986:113 (lista).

Redescripción. Macho. Rostro 1,4 veces más

largo que ancho, 0,5 veces el largo del protórax,

carenas laterales marcadas, revestido con es-

camas setiformes amarillentas con reflejos cobri-

zos. Antenas con antenito 1 del funículo 1,7 veces

más largo que el 2. Protórax 0,9 veces el largo en

el ancho, con surco longitudinal medio, revestido

con escamas no imbricadas y setas amarillentas

con reflejos cobrizos. Elitros 1,7 veces más largos

que anchos, interestrías levemente convexas;

revestidos con escamas imbricadas y setas amar-

illentas. Patas con protibias rectas, metatibias con

un espolón. Aedeagus (Figs. 4, 5) débilmente

curvado en el tercio apical, con ápice anchamente

redondeado.

Hembra. Tubérculos anteapicales rectos y

tubérculos apicales prominentes. Esternito 8

como en la Fig. 9. Hemiesternitos y espermateca

similares a los de L. curvipes.

Logitud total (protórax + élitros) 5,5-6,5 mm.

Material tipo. Lectotipo d: (Ovalle) (151)

(holotype d/ fallax/ Germain) (fallax/ P. G.)

(Listroderes/ fallax/ Germain/ det. G. Kuschel/

1981) (Lectotipo d/ Listroderes fallax/ Morrone

des. 1993) (MHNS). Dos paralectotipos 3 d y 1 Q

(MHNS) con los mismos datos.

Otros materiales examinados. CHILE. Bío-Bío:

Mulchén, 111-1949, F. H. Walz col., 3 (CWOB).

LISTRODERES TUBERCULIFER

BLANCHARD

(Figs. 6, 7, 10)

Listroderes tuberculifer Blanchard 1851:344;

Gemminger £ Harold 1871:2361 (cat.); Germain

1895:57; Schenkling £ Marshall 1931:10 (cat.);

Blackwelder 1947:813 (lista); Wibmer €: O”Brien

1986:115 (lista); Elgueta € Jackson 1987:73

(lista).

Listroderes inaequalis Blanchard 1851:344; Gem-

minger 4 Harold 1871:2360 (cat.); Schenkling €

Marshall 1931:8 (cat.); Blackwelder 1947:813

(lista); Kuschel 1955:289 (= L. tuberculifer).

Listroderes binodosus Germain 1895:57, 1911:205

(lista); Schenkling $ Marshall 1931:6 (cat.);

Blackwelder 1947:812 (lista); Kuschel 1950:13 (=

L. tuberculifer).

Redescripción. Macho. Rostro 1,3 veces más

largo que ancho, 0,5 veces el largo del protórax,

carenas laterales poco marcadas, revestido con

escamas setiformes amarillentas con reflejos co-

brizos. Antenas con antenito 1 del funículo 2,0

veces más largo que el 2. Protórax 0,8 veces el

Morrone: Revisión de Listroderes grupo curvipes

xA A Aáá —_———— > AAA A

12 l A

Figuras 2 - 12: Listroderes grupo curvipes, genitalia. 2, 4, 6, aedeagi, vista dorsal; 3, 5, 7, aedeagi, vista lateral; 8-10,

esternito 8 de la hembra, vista ventral; 11, hemiesternito; 12, espermateca. 2, 3, 8, 11, 12, £. curvipes; 4, 5,9, L. fallax:

6, 7, 10, L. tuberculifer. Escalas: 2-7: 1 mm; 8-12: 0.5 mm.

20 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

largo en el ancho, con surco longitudinal medio,

revestido con escamas no imbricadas y setas

amarillentas con reflejos cobrizos; patrón de

coloración con una línea longitudinal amarillenta

en la parte media y dos manchas laterales. Elitros

1,6 veces más largos que anchos, interestrías

levemente convexas; con pliegues transversales;

revestidos con escamas imbricadas y setas amarl-

llentas con reflejos cobrizos; patrón de coloración

con manchas negruzcas. Patas con protibias rec-

tas, metatibias con dos espolones. Aedeagus (Figs.

6, 7) fuertemente curvado en el tercio apical, con

ápice anchamente redondeado.

Hembra. Tubérculos anteapicales aguzados y

tubérculos apicales pequeños. Esternito 8 como

en la Fig. 10. Hemiesternitos y espermateca

similares a los de L. curvipes.

Figura 13. Listroderes grupo curvipes, distribución

geográfica. Listroderes curvipes (círculos negros), L.

fallax (círculos blancos) y L. tuberculifer (cuadrados

negros).

Longitud total (protórax + élitros) 6,1-7,1 mm.

Material tipo. Holotipo d de L. tuberculifer Blan-

chard: (4/49) (S. tago) (Museum Paris/ Chili/ Cl.

Gay 1849) (type) (Listroderes/ tuberculifer/ type

Blanchard) (MNHN).

Holotipo d de L. inaequalis Blanchard: (4/

49) (Museum Paris/ Chili/ Cl. Gay 1849) (type)

(Listroderes/ inaequalis/ type Blanchard)

(MNHN).

Lectotipo Y de L. binodosus Germain:

(Santgo.) (108) (holotype d/ binodosus/ Ger-

main) (binodosus/ P. G.) (Listroderes/ tubercu-

lifer/ Blanchard/ det. G. Kuschel/ 1981) (Lec-

totipo d/ Listroderes binodosus/ Morrone des.

1993) (MHNS). Once paralectotiposdd y once 92

(MHNS) con los mismos datos.

Otros materiales examinados. CHILE. Arauco:

isla Mocha, 26-11-1957, Longere col., 3 (MHNS).

Valdivia: Llancahué, 24-VII-1963, 1 (MHNS);

Valdivia, 13-XII-1974, L. E. Peña col., 24

(HAHO), 8-XII-1981, Krahmer col., 1 (MHNS).

Sin localidad precisa: 3 (MHNS).

DISCUSION

Germain (1895a-c, 1896a, b) clasificó las especies

de Listroderes de Chile en secciones. En la sección

cuarta incluyó dos agrupaciones, una para L.

curvipes, L. binodosus (= L. tuberculifer) y L.

fallax, y otra para £. delaiguei y L. magellanicus

(actualmente sinónimos). Las especies de la

primera agrupación constituyen un grupo

monofilético, pero no se relacionan con L£. de-

laiguei, especie que debe ser incluida en el grupo

de especies afines a £. costirostris Schoenherr.

El grupo curvipes de Listroderes €s

característico de Chile central, área cuya riqueza

en especies de este género ha sido destacada por

Elgucta (1988).

AGRADECIMIENTOS

Agradezco a los responsables de las colecciones

que facilitaron sus materiales para este estudio y

a Analía A. Lanteri por la lectura crítica del

manuscrito. El trabajo se realizó con el subsidio

3966-80 de la national Geographic Society. El

autor es becario del Consejo Nacional de Inves-

tigaciones Científicas y Técnicas (CONICET), al

que agradece su apoyo.

Morrone: Revisión de Listroderes grupo curvipes 21

LITERATURA CITADA

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aan fon 00 ob vada

Alo: cum

a :e 2 A

mí

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 23-30.

AMBITO DE HOGAR DE CAMPONOTUS MOROSUS SMITH, 1858

(HYMENOPTERA, FORMICIDAE)!

Joaquín IrInza-REGLA?, ANTONIO GALANO? Y María A. Moraes?

RESUMEN

Se caracteriza el ámbito de hogar (home-range) de Camponotus morosus en un área precordill-

erana de Chile central. En enero, febrero y marzo se estudiaron dos sectores separados por 300

metros entre ellos. Se analiza la variable distancia recorrida por 10 hormigas registrándola en

dos nidos de cada sector.

El análisis de varianza de la variable distancia dio diferencias significativas entre meses, pero

no entre sectores, ni entre nidos de cada sector y tampoco interacción entre mes y sector.

Se determinó el ámbito de hogar por medio del método del área mínima.

ABSTRACT

The home -range of Camponotus morosus was studied in 2 sites 300 m apart in the foothills of

the Andes moutains in central Chile. The distances traveled from the nest by 10 ants were

measured for each nest.

Analysis of variance of 3 different times (January, February, March) of the variable distance

showed significant differences between months, but not between sites, or between nests in each

site, or interaction between month and site.

The home -range was measured by the Minimum Area method.

INTRODUCCION

Camponotus morosus Smith, 1858, es una de las

especies más conspicuas y una de las más abun-

dantes en la zona de matorral precordillerano, en

la región Metropolitana (Ipinza ef al., 1986, 1990).

Esta especie se ha encontrado también en

zonas de alta cordillera, donde constituye el 6,1%

de los nidos de Formicidae en alturas preferencia-

les de 2.140-2.540 msm (Ipinza et al., 1983).

El objetivo del presente trabajo será estudiar,

y por primera vez en Chile, el ámbito de hogar de

Camponotus morosus en una zona precordiller-

ana de Chile central, determinando el área donde

se moviliza.

ITrabajo financiado por DTI, proyecto 2217 Universi-

dad de Chile y proyecto FONDECYT 92-0959.

2Laboratorio de Zoología, Fac. Ciencias Veterinarias y

Pecuaria, Universidad de Chile, Casilla 2 Santiago (15) - Chile.

(Recibido: 6 de marzo de 1992. Aceptado: 13 de

noviembre de 1992).

MATERIAL Y METODOS

El presente estudio se realizó en San Carlos de

Apoquindo, 20 kilómetros al Este de Santiago

(3324 S.; 7029” W.), que es una zona de matorral

precordillerano ubicada en una meseta de acceso

a los primeros contrafuertes de la cordillera de los

Andes. El clima es de tipo mediterráneo.

Bioclimáticamente, la zona de muestreo queda

englobada en la región mediterránea semi árida

(Di Castri, 1968).

La fisonomía de la vegetación en el sitio de

muestreo corresponde a un matorral esclerófilo

de la zona central de Chile, predominando

Lithraea caustica “litre” y Quillaja saponaria

“quillay”, entre otros.

Para realizar nuestras observaciones se eli-

gieron dos sectores (sector A y sector B) separa-

dos por 300 metros entre sí, distancia que nos

permite descartar algún posible polidomismo

entre los nidos en estudio. En cada uno de estos

sectores se observaron dos nidos de la hormiga C.

morosus. Se midió la distancia o recorrido

máximo alcanzado por ésta desde el punto de

salida del nido.

24 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

El muestreo se realizó en los meses de enero,

febrero y marzo de 1989, y en las horas de máxima

actividad, entre las 10:00 - 12:00 y 15:00 - 17:00

horas (Ipinza el al., 1988).

Para determinar el ámbito de hogar, se

consideró un número de diez exploradoras por

nido, adaptando el método del área mínima según

las consideraciones realizadas por Southwood

(1966). Esta adaptación, original, consistió en

triangular el área de exploración de las hormigas

salidas de cada nido. Para este fin, se trazaron

triángulos considerandos dos máximas distancias

recorridas por las hormigas en estudio, in-

cluyendo en el interior de estos triángulos, distan-

clas menores recorridas. De esta manera dos

lados del triángulo (lado a y lado b) quedan

estructurados por dos máximas distancias y el

tercero (lado c) por la unión entre éstas. Es así

como se obtienen tres o más triángulos por nido,

a los cuales se les determina el área en forma

individual, las que se suman, obteniéndose el área

total que corresponde al ámbito de hogar. (Figura

Por otra parte, la marcación de los puntos de

medición se realizó en base a pequeñas estacas,

las cuales fueron colocadas a intervalos de tiempo

(un minuto), desde el momento que la hormiga

sale del nido, hasta alcanzar la máxima distancia,

permitiendo de esta forma mapear la conducta de

desplazamiento de la hormiga a través del campo

(Figura 2).

Area =

S (S-a) (S-b) (S-c)

Figura 1: Método de triangulación.

El análisis estadístico de los resultados con-

sistió en describir, las distancias recorridas por las

obreras de C. morosus desde el nido, mediante el

promedio (x) y desviación típica (s). Se realizó un

análisis de varianza de la variable distancia recor-

rida por las hormigas y un análisis de varianza de

la variable ámbito de hogar de la misma. En

aquellos análisis de varianza con valores de F

significativos, se aplicó la prueba de Tukey.

RESULTADOS Y DISCUSION

En la Tabla 1 se entregan los promedios y desvia-

ciones típicas de la distancia en centímetros recor-

rida por C. morosus desde cada uno de los nidos

hasta el punto más lejano. El promedio de la

distancia recorrida por la hormiga fluctuó entre

162,5 cm y 203,3 cm. El análisis de los resultados

de este cuadro nos permite apreciar la homo-

geneidad de la variable distancia mencionada

dada por la baja desviación típica que presenta, la

que al relacionarla con su promedio, nos muestra

coeficientes de variación no superiores a un 13%.

Figura 2: Marcación de los puntos de desplazamiento,

con estacas.

Ipinza et al.: Ambito de hogar de Camponotus morosus

TABLA 1

PROMEDIOS Y DESVIACION TIPICA DE LA DISTANCIA (cm) RECORRIDA POR

CAMPONOTUS MOROSUS DESDE LA SALIDA DEL NIDO

(x = promedio;

Sector Nidos Enero

Xx S

1 181,4 24,3

2 162,5 2

3 191.0 14,1

4 197,1 12,4

TABLA 2

RESULTADOS DEL ANALISIS DE

VARIANZA DE LA VARIABLE DISTAN-

CIA VALORES DE F, SU SIGNIFICACION

Fuente de variación F

Entre sectores (A y B) 5,042

Entres meses 29,612 *

Entre nidos (sector) 0,190

Interacción mes/sector 2,190

Interacción mes/nidos (sector) 15,810

* = Significativo (p < 0,01)

Respecto a las observaciones mensuales podemos

describir que las distancias promedio recorridas

por las hormigas en estudio en el mes de enero

son inferiores a las distancias recorridas en los

meses de febrero y marzo, a excepción del nido 4.

Los datos de la Tabla 2 muestran que no existe

diferencias significativas en las distancias prome-

dio recorridas en el sector A respecto al sector B

ni entre los nidos de un mismo sector y tampoco

existe interacción significativa del mes con el

sector ni del mes con nidos de cada sector. En

cambio los meses de enero, febrero y marzo,

muestran diferencias significativas (p < 0,01). De

desviación típica)

Febrero Marzo

S Xx S

119 190,6 17,0

Al 191,5 17,4

10,6 200,1 18,8

11.6 196,1 2

acuerdo a la prueba de Tukey, el promedio del

mes de enero, difiere del promedio de febrero y

marzo; en cambio, entre los promedios de febrero

y marzo no existen diferencias significativas.

Al analizar el ámbito de hogar de C. morosus,

llama la atención que en los cuatro nidos obser-

vados, las obreras exploradoras siempre reali-

zaron un recorrido unidireccional. La amplitud

angular no alcanzó a los 90”. Sería interesante

estudiar en futuras investigaciones los factores

determinantes de estos comportamientos.

El ámbito de hogar de C. morosus se analizó

según la metodología de Southwood (1966)

modificada, presentando los resultados en la

Tabla 3.

Los resultados que se desprenden de la Tabla

3 y desarrollados en las figuras 3 a 14, nos indican

que en el mes de marzo, en ambos sectores, el

área medida en metros cuadrados es superior alas

áreas de los meses precedentes, enero y febrero.

El área del mes de febrero, ocupa un nivel inter-

medio en relación al área recorrida de los meses

de marzo y enero. Por último, en el mes de enero,

el área es menor, a excepción del nido 3 ubicado

en el sector B del área de muestreo (1,53 m2).

Para verificar la existencia de diferencias

significátivas en el ámbito de hogar de C. morosus

entre los meses de muestreo, entre los sectores (A

y B) y la posible interacción mes/sector se realizó

un análisis de varianza.

De la observación de los datos de Tabla 4, se

evidencia que existen diferencias significativas (p

26 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

TABLA 3

AMBITO DE HOGAR SEGUN METODO

DE SOUTHWOOD MODIFICADO, EN

NIDOS DE CAMPONOTUS MOROSUS

(METROS CUADRADOS).

Sector Nido Enero Febrero Marzo

1 0,89 1,31 2,00

2 0,99 1,29 JESS

3 1,53 1,39 1,73

4 178) 1,32 1,98

Promedio 1,16 1,33 1,82

Desviación 0,28 0,04 0,22

< 0,01) en el ámbito de hogar, medido en metros

cuadrados, de C. morosus entre los meses de

enero, febrero y marzo. Mediante la prueba de

Tukey se verificó que el mes de marzo presenta

un área significativamente mayor que los meses

de enero y febrero.

De acuerdo a nuestras observaciones, nos

llamó la atención el tipo unidireccional del ámbito

de hogar de C. morosus, conducta que no

esperábamos dado que en la naturaleza, lo obser-

vado en diversas especies de animales es una

distribución homogénea alrededor del nido o

refugio, es decir, abarcando los 360” (Vaz-Fer-

reira, 1984). Pensamos que esta conducta se

debió, presumiblemente, a que los nidos en estu-

dio se ubicaban próximo a matorrales, y consid-

erando que la disponibilidad de alimento bajo

ellos es más abundante, se podría explicar esta

distribución tan particular del ámbito.

Como anexo a nuestras observaciones des-

cribimos el desplazamiento que realiza C. moro-

sus dentro del ámbito de hogar estudiado: ini-

cialmente en línea recta, alejándose del nido,

alcanzando aproximadamente la mitad de la dis-

tancia máxima.

A partir de este punto el desplazamiento es

en zig-zag, pero siempre manteniéndose dentro

de ciertos límites, abarcando prácticamente la

totalidad del ámbito de hogar.

Una vez que la hormiga alcanza la máxima

distancia, el retorno hacia el nido es

prácticamente en línea recta, tardando un lapso

TABLA 4

RESULTADOS DEL ANALISIS DE

VARIANZA; VALORES DE F Y SU

SIGNIFICACIÓN PARA LA VARIABLE

AMBITO DE HOGAR DE

CAMPONOTUS MOROSUS

Fuente de variación F

Entre meses VALS

Entre sectores (A y B) 3,39

Interacción mes/sector 1,28

* = Significativo (p < 0,01).

inferior al utilizado en la máxima distancia (Fi-

gura 2).

Esta conducta de desplazamiento de C. mo-

rosus es similar a la conducta observada por

Harkness (1977, 1979, 1980) en la hormiga Cata-

glyphis bicolor.

CONCLUSIONES

Aunque el recorrido de Camponotus morosus es

zigzagueante, la orientación de éste es unidi-

reccional.

La distancia recorrida por C. morosus es una

característica homogénea fluctuando sus prome-

dios por nido entre 1,63 y 2,03 metros.

La distancia recorrida en el mes de enero es

significativamente inferior a los meses de febrero

y marzo.

El ámbito de hogar o home-range de la

especie fluctúa entre 0,89 y 2,00 metros cuadra-

dos. Existen diferencias significativas de áreas

durante los meses de enero y febrero con respecto

a marzo.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen el apoyo financiero

brindado por el Departamento Técnico de

Investigación, Universidad de Chile (DTIE

Proyecto 2217) y FONDECYT, proyectos: 90-

1030 y 92-0959.

Ipinza et al.: Ambito de hogar de Camponotus morosus 27

M 0,1068 m?

AD = 0,4672 m

N E ATI = 0,2967 m2

e AV = 0,0194 m2

o s AT = 0,8901 m? Ly E NS AJ 0,2093 m2

7 So ATI = 0,9216 m2

Escala 1:10 o s e ES Am” 0,1821 m

7 1005

1 5 DS Ly

Escala 1:10 IR > AT =1,3120 nm?

A 6

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NIDO

y z A = 0,0905 ml

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o .7 A 0307 Escala 1:10 A A IV = 0,0867

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Figura 3: Sector A, Enero, Nido 1: forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 4: Sector A,

Febrero, Nido 1: forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 5: Sector A, Marzo, Nido 1:

forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 6: Sector A, Enero, Nido 2: forma del ámbito

de hogar, sus triangulaciones y área total.

28 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Dal AJ 2 0,2545 m2

N E

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e AIN = 0,5575 m TA Y A 1251

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Figura 7: Sector A, Febrero, Nido 2: forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 8: Sector

A, marzo, Nido 2: forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 9: Sector B, Enero, Nido 3:

forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 10: Sector B, Febrero, Nido 3: forma del ámbito

de hogar, sus triangulaciones y área total.

Ipinza et al.: Ambito de hogar de Camponotus morosus 29

OS.

N E A =0,120% m

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CN 0 as o s ATI =0,6188 2

Prrala 1:10 3 YO OM 0,347 2 My =0,2761 12

A GOA IV 0,2572 1? Escala 1:10 y OO

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MAT = 1,7282 1? Mm -126m2

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XA A A -0,1871 2

» E AD =0,9%2

OS A =0,1664 22 Escala 1:10 Av = 0,5588 02

o 5 MI =0,0950 m2 Ho 1,80

A = 0,2525 m2

Escala 1:10 a E SoSR

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Figura 11: Sector B, Marzo, Nido 3: forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 12: Sector

B, Enero, Nido 4: forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 13: Sector B, Febrero, Nido

4: forma del ámbito de hogar, sus triangulaciones y área total. Figura 14: Sector B, Marzo, Nido 4: forma del ámbito

de hogar, sus triangulaciones y área total.

30 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

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precordillerano de Chile Central. Bol. Soc. Biol.

Concepción., 57:75-79.

Irinza, J.; COVARRUBIAS, R.; MORALES, M.A.; Mann, A.;

MARTÍNEZ, J. 1988. Períodos de actividad de Cam-

ponotus morosus (Smith, 1858), (Formicidae).

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Irinza, J.; CovARRUBIAS, R.; MoraLes, M. A. 1990.

Distribución espacial de nidos de hormigas en un

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Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 31-34.

IMPORTANCIA DE LA PERSISTENCIA, EN EL ARBOL, DE FRUTOS

DE ACACIA CAVEN EN LA INFESTACION POR

PSEUDOPACHYMERINA SPINIPES (COLEOPTERA: BRUCHIDAE)

FRANCISCO SÁIZ!

RESUMEN

Se estudia el posible rol de la persistencia de frutos de Acacia caven y su relación con el brúquido

Pseudopachymerina spinipes.

Para este propósito se evaluó la infestación de frutos caídos al suelo y frutos en el árbol (junio,

1987), además de frutos persistentes en el árbol (septiembre, 1987). El material se ubicó en

recipientes plásticos, en condiciones de laboratorio, controlando diariamente la emergencia de

adultos de P. spinipes, hasta abril de 1988.

El alto grado de infestación de los frutos persistentes, significativamente diferente del resto,

tendería a asegurar un contingente reproductivo alto de P. spinipes, para la siguiente estación.

Asimismo la proporción de semillas sanas, capaces de germinar en la próxima estación, también

es alta. Se propone que la relación P. spinipes - A. caven, constituye una relación estable.

ABSTRACT

The possible rol of the Acacia caven, persistent fruits in its relation with the bruchid Pseu-

dopachymerina spinipes is studied.

For this purpose the characteristics of the infestation of: fruits fallen to the ground and in

the tree to 06-02-87 and persistent fruits to 09-04-87 were evaluated. The material was placed in

flasks, in laboratory conditions, where the emergency of adults, up to 04-06-1988, was controlled

daily.

The greatest degree of infestation of the persistent fruits, significantly different, would tend

to secure a bigger reproductive contingent of P. spinipes for the following season. Also, the

proportion of non affected seeds of A. caven feasible to germinate in the following season is bigger.

The relation P. spinipes-A. caven as a stable relation is proposed.

INTRODUCCION

Durante la realización de una serie de trabajos

sobre la relación entre Pseudopachymerina

spinipes (Er.) (Bruchidae) y Acacia caven (Mol.)

Mol. (Mimosaceae), surgió la inquietud por

conocer las características y el rol que cumplen, en

dicha relación, los frutos que persisten en el árbol

más allá del período normal de caída al suelo,

especialmente en cuanto al contingente de

Ecología, Universidad Católica de Valparaíso, Casilla

4059, Valparaíso - Chile.

(Recibido: 23 de mayo de 1992. Aceptado: 14 de enero

de 1993).

brúquidos disponibles para el nuevo período de

infestación (Sáiz et al., 1977 a y b, 1980 y 1987; Sáiz

y Soto 1982; Avendaño y Sáiz 1978 y Yates el al.,

1989).

Al respecto caben las siguientes hipótesis: a)

que la planta presente características fisiológicas

tendientes a desprenderse rápidamente de aquel-

los frutos con mayor infestación con el fin de

disminuir la carga poblacional de brúquidos fa-

voreciendo su destrucción en el suelo, ya sea por

acciones mecánicas, condiciones ambientales o

por la mayor presión de predación por

micromamíferos e insectos (Zunino et al, 1992);

o bien, b) que la mayor infestación provoque en

la planta reacciones fisiológicas tendientes a

anular la acción del brúquido en el mismo fruto,

reacciones que retrasarían su desprendimiento al

32 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

mantener más tiempo el flujo energético inten-

tando cicatrizar los tejidos tanto de las semillas

como de los frutos. Esta última opción sería la que

aseguraría en mejor forma la existencia de un

mayor stock de brúquidos adultos para el nuevo

ciclo poblacional.

Dentro de ese contexto se presentan los

objetivos de la presente comunicación:

1. Evaluar el grado de infestación de frutos y

semillas de Acacia caven por Pseudopachymerina

spinipes, según el tiempo de persistencia del fruto

en el árbol.

2. Evaluar modelos fenológicos de emergencia de

adultos de Pseudopachymerina spinipes según el

tiempo de permanencia de los frutos en el árbol.

MATERIAL Y METODO

Para satisfacer los objetivos planteados, se tra-

bajaron tres stocks de frutos con diferentes tiem-

pos de persistencia en el árbol:

a) frutos caídos al suelo al 2-6-87.

b) frutos persistentes en el árbol al 2-6-87.

c) frutos persistentes en el árbol al 4-9-87.

El material de junio se obtuvo seleccionando

al azar 16 espinos. En cada uno de ellos, también

al azar, se obtuvo 8 frutos del suelo y 8 frutos del

árbol, con un total de 128 frutos por condición. El

material de septiembre se obtuvo de diferentes

árboles, según disponibilidad, colectándose sol-

amente 82 frutos.

Este material entregó los siguientes totales de

semillas:

a) junio-suelo : 2.919

b) junio-árbol E 293

c) septiembre-árbol : 1.776

Total 7.626

Cada fruto se dejó en un frasco de plástico

cubierto por muselina, bajo condiciones estandar

de laboratorio. En la medida que emergían

brúquidos de los frutos, éstos se desgranaban, se

contabilizaban las semillas perforadas y las no

perforadas, dejándose éstas últimas en el mismo

frasco. Diariamente se controló la emergencia de

adultos de P. spinipes en la totalidad de los fras-

COS.

La investigación se terminó el 6 de abril de

1988 y fue realizada en la Reserva Forestal

Peñuelas (CONAF-V Región).

Se deja constancia que la época de

recolección del material de frutos y semillas de

Acacia caven no afecta los niveles de infestación

para ese ciclo de desarrollo, ya que la postura no

supera fines de marzo o principios de abril, siendo

básicamente de enero-febrero (Avendaño y Sáiz,

1978).

RESULTADOS Y DISCUSION

Del análisis del grado de infestación (Tabla 1)

puede concluirse que a mayor persistencia de los

frutos en el árbol, el porcentaje de infestación por

brúquidos es mayor, siendo significativamente

mayor (p= 0,05) para semillas y frutos persisten-

tes en septiembre respecto a las otras dos condi-

ciones.

Ello sería explicable por la respuesta fisiológica

de la planta ante el daño producido por el ingreso

de las larvas a las semillas, la cual trataría de

anular mediante cicatrizaciones que mantendrían

activa por más tiempo la comunicación fisiológica

fruto-planta.

En cuanto a los esquemas fenológicos (Figs.

1 y 2) resulta evidente que la emergencia de

FRUTOS

40 Septiembre

20 -

£0

% DE PERFORACION

AVATAR

MENTA TAS O IN AO E EAMIA 23M

Figura 1: Evolución mensual de la perforación de

frutos, medida por la emergencia del primer adulto de

P. spinipes, según tiempo de persistencia de frutos en

el árbol.

Sáiz: Frutos de Acacia caven - infestación por Pseudopachymerina spinipes 33

TABLA 1

INFESTACION (%) DE FRUTOS Y SEMILLAS DE ACACIA CAVEN POR

PSEUDOPACHYMERINA SPINIPES Y SIGNIFICACION DEL TEST DE DIFERENCIA

DE PROPORCIONES (p= 0,05).

Infestación Signifi-

SI NO Duplas cación

FRUTOS

Junio-Suelo 46.9 53.1 Junio-Suelo/Junio-Arbol NS

Junio-Arbol 51.6 48.4 Junio-Suelo/Sept. -Arbol S

Septiembre-Arbol 65.9 34.1 Junio-Arbol/Sept.-Arbol S

SEMILLAS

Junio-Suelo 18.2 SEZ Junio-Suelo/Junio-Arbol NS

Junio-Suelo 16.4 83.6 Junio-Suelo/Sept. -Arbol S

Septiembre-Arbol 26.6 73.4 Junio-Arbol/Sept. -Arbol S

adultos de P. spinipes es más tardía en los frutos

y semillas persistentes en septiembre, aumen-

tando las posibilidades de que dichos adultos

encuentren el sustrato adecuado para la

ovoposición (frutos en maduración o maduros,

Avendaño y Sáiz 1978; Sáiz et al., 1987; Yates et

al., 1989).

Además, los modelos de entrega de adultos

de brúquidos por los tres tipos de frutos y semillas

SEMILLAS

Septiembre

40 Arbol

% DE PERFORACION

HASTE TS USARA Y

ASA MO INIA MES ESMAS MA

Figura 2: Evolución mensual de la emergencia de

adultos de P. spinipes desde las semillas, según tiempo

de persistencia de frutos en el árbol.

analizados (emergencia), ratifican la similitud

entre los colectados en junio y su diferencia

temporal y cuantitativa con los aún persistentes en

septiembre (Fig. 3).

La altísima producción de semillas por parte de A.

caven (18.9 semillas /fruto y cientos de frutos por

árbol, Sáiz et al., 1977b), los bajos niveles de

infestación de semillas (19.6%, Sáiz et al., 1977b),

SEMILLAS

FRUTOS

AAA SAA AAA

ATAN O ERA AA

Figura 3: Evolución quincenal de la supervivencia de

frutos y semillas “sin perforar por emergencia de

adultos de P. spinipes”, según tiempo de persistencia de

frutos en el árbol.

34 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

la bimodalidad en la emergencia de adultos (Sáiz

et al., 1987), la que aseguraría que una de esas

modas coincida con la presencia de sustrato

adecuado para la ovoposición, cautelando así las

variaciones fenológicas del espino y los resultados

de este trabajo permiten sostener que la relación

entre P. spinipes y A. caven está ya plenamente

establecida y es estable.

CONCLUSIONES

Del análisis precedente puede concluirse que la

estrategia seguida por Pseudopachymerina

spinipes en su relación con Acacia caven, corres-

ponde a nuestra hipótesis b, es decir, que la

persistencia de frutos aseguraría la supervivencia

de la población del brúquido. Por otra parte, al

caer primero los frutos con menor grado de

infestación, se beneficiaría el vegetal al aumentar

la proporción de semillas sanas disponibles para

la germinación durante el período reproductivo

inmediatemente siguiente, máxime si, aparente-

mente, el banco de semillas en el suelo es de tipo

transiente y no persistente.

El conjunto de antecedentes aportados por

este trabajo y por aquellos en él citados permiten

sostener que la relación brúquido-espino en

consideración está plenamente establecida y es

estable.

LITERATURA CITADA

AVENDAÑO, V. Y F. SAIZ. 1978. Estudios ecológicos sobre

artrópodos concomitantes a Acacia caven. 1V.-As-

pectos biológicos de Pesudopachymerina spinipes

(Er.). An. Mus. Hist. Nat. Valparaíso (Chile), 11:

81-88.

Sárz, F., E. Vásquez Y H. MotLlina. 1977a. Estudios

ecológicos sobre artrópodos concomitantes a

Acacia caven. 1.- Taxocenosis de insectos asociados

a la inflorescencia. An. Mus. Hist. Nat., Valparaíso

(Chile), 10: 135-152.

Sárz, F., D. CAsanova, V. AVENDAÑO Y E. VÁSQUEZ,

1977b. Estudios ecológicos sobre artrópodos con-

comitantes a Acacia caven. 11.- Evaluación de la

infestación por Pseudopachymerina spinipes (Er.).

An. Mus. Hist. Nat. Valparaíso (Chile), 10: 153-

160.

SAIZ, F., V. AVENDAÑO Y W. SiELFELD. 1980. Anteceden-

tes preliminares sobre la relación brúquido-Acacia

caven. Rev. Chilena Ent., 10: 93-96.

SArz, F. y J. Soro, 1982. Relación entre la forma del

fruto de Acacia caven y las características de las

semillas y de los brúquidos de los infestan. An.

Mus. Hist. Nat. Valparaíso (Chile), 15: 71-77.

Sárz, F., M. Daza, Y D. Casanova. 1987. Relaciones

fenológicas entre Pseudopachymerina spinipes

(Bruchidae) y Acacia caven (Leguminosae). An.

Mus. Hist. Nat. Valparaíso (Chile), 18: 55-64.

YATES, L., M. Daza y F. Sárz. 1989. Energy budget of

the adult of Pseudopachymerina spinipes (Er.). Ca-

nadian Journal of Zoology, 67: 721-726.

ZUNINO, S., F. Sáiz Y L. Yates. 1992. Uso del espacio,

densidad de Octodon dequs y oferta de recursos en

Ocoa, Parque Nacional La Campana, Chile.

Revista Chilena de Historia Natural, 65: 343-355.

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 35-41.

DESCRIPCION DE LOS ESTADOS PREIMAGINALES Y ASPECTOS

DE LA HISTORIA NATURAL DE EUPITHECIA HORISMOIDES

RINGE, 1987 (LEPIDOPTERA: GEOMETRIDAE), PERFORADOR DEL PECIOLO

DEL PANGUE (GUNNERA TINCTORIA)'

Héctor IBarra-ViDAr? Y Luis E. PARRA?

RESUMEN

Se describe el huevo, larva y pupa de Eupithecia horismoides Rindge, 1987, lepidóptero

geométrido cuya larva consume el pecíolo del pangue, Gunnera tinctoria (Mol.) Mirb. Se incluye

información sobre su ciclo de vida, parasitismo, distribución y observaciones generales.

ABSTRACT

The egg, larvae and pupae of to Eupithecia horismoides Rindge, 1873 are described. This

geometrid moth is a leaf-stalk borer on Gunnera tinctoria (Mol.) Mirb. (“pangue”). Observations

on life cycle, parasitism, distribution and general observations are included.

INTRODUCCION

El género Eupithecia Curtis 1825, es de

distribución casi cosmopolita, presentándose en

Norteamérica, Europa y Japón; en Sudamérica se

distribuye por toda la vertiente occidental de la

cordillera de los Andes (Rindge, 1987).

De este género, aunque Rindge (1987) reco-

noce 43 especies para Chile distribuidas entre la

Il y X regiones e Isla Más a Tierra, en el

archipiélago de Juan Fernández (V Región), no se

dispone de información sobre sus estados in-

maduros o biología (Rindge, 1987).

Recientes estudios que se realizaban sobre la

biología del insecto que consume el pecíolo del

pangue, Gunnera tinctoria (Mol.) Mirb., permitie-

ron la obtención de una mariposa descripta por

Rindge en su obra citada. La descripción de los

estados preimaginales y las observaciones sobre

su biología son el objetivo de la presente

publicación.

Financiado por D.LU.C. 20.38.14 y 92.38.26-1.

“Departamento de Zoología, Universidad de

Concepción, Casilla 2407-10, Concepción Chile.

(Recibido: 23 de julio de 1992. Aceptado: 14 de enero

de 1993.)

MATERIALES Y METODOS

El material entomológico utilizado en este estu-

dio proviene de recolecciones realizadas en diver-

sas localidades del sur de Chile entre 1988 y 1991.

El ciclo de vida y el período de vuelo se

determinaron con el trabajo de campo y de labo-

ratorio, producto de la crianza del material pre-

imaginal recolectado, y mediante la revisión de

ejemplares conservados en el Museo de Zoología

de la Universidad de Concepción.

El huevo descripto se basó en aquellos

puestos por hembras emergentes, previa cópula.

Las fotografías al microscopio electrónico de

barrido (SEM) fueron hechas por el personal del

Laboratorio de Microscopía Electrónica de la

Universidad de Concepción.

RESULTADOS

Descripción de los estados preimaginales

HUEVO (figs. 1 y 2): mide 775 micrones de alto

y 525 micrones en su ancho máximo; forma oval-

ada, color blanquecino, con superficie levemente

ornamentada por un diseño en mosaico (fig. 1); la

micropila (mi) ubicada en el polo animal, está

rodeada por una roseta con 5 celdas (ce) prima-

36 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

rias de forma trasovada (fig. 2).

LARVA (Figs. 3-8): Color y patrón de coloración

en vivo: en sus primeros dos estadios la larva

presenta una coloración general beige con tenues

manchas blanquecinas en el dorso; en el resto de

los estadios se hace evidente un diseño de

manchas regulares dorsales en el que se alternan

las tonalidades de castaño claro y blanquecino pu-

diendo llegar al pardo oscuro. La zona ventral es

Figuras 1-2: Huevo de E. horismoides Rindge. 1, vista

lateral; 2, región de la micropila. ce: celda; mi: mi-

cropila.

de color blanquecino.

Caracteres morfológicos: largo total larva

último estadío, 28 mm, ancho máximo 3,4 mm.

Cuerpo de 13 segmentos; segmentos torácicos con

patas; 3 pares de espuripedios desde el séptimo al

noveno segmento y un par de espuripedios anales

en el último segmento. Cabeza hipognata (fig. 4)

cuyo ancho máximo es de 2 mm y su alto de 11,9

mm. La sutura frontal (sf) alcanza 7/8 del alto de

la cabeza; clípeo (clp) en forma de huso, labro

(Ibr) con una invaginación profunda en su mitad

ventral (alrededor del 35% de su alto medio) (fig.

7). Antenas (ant) (fig. 3 y 4) formadas por dos

segmentos que nacen del escapo, el segmento

proximal a ésta subigual a la mitad del segmento

distal; mandíbula (figs. 5 y 6) con una pequeña

apófisis de articulación, posee cuatro dientes

grandes en los dos tercios externos y otros dos

pequeños en el tercio interno de su borde distal.

Area ocular (fig. 3): la línea que une a los ocelos

(oc) I y VI pasa entre la base de las cerdas 01 y

02 pero más cerca de 01; la línea que une los

ocelos III y V pasa por el centro del ocelo TV.

Protórax (fig. 8) con XD1, XD2, D1, D2 y SD1

sobre el escudo cervical, D1 más cerca a D2 que

a XD1; con una cerda preespiracular (L1) corrida

levemente hacia la región ventral; SV1 y SV2 en

pináculos diferentes pero muy próximos entre sí,

SV1 1/3 del tamaño de SV2.

Mesotórax (fig. 8), D1 y SD2 representadas por

un punto; D2 y SD1 normales; L1-L3 presentes,

L3 y L1 al menos dos veces más largas que L2; SV

unisetosa.

Primer al quinto segmento abdominal (fig. 8); D1

y D2 presentes; con dos cerdas laterales, L1 y L2,

tres subventrales y dos ventrales; sexto, séptimo y

octavo segmento con un punto por sobre el

espiráculo que corresponde a SD1; noveno seg-

mento con tres cerdas: D2, L3 y SV1, SD1 está

representada por un punto. Espuripedios nor-

males, con los crochets en mesoserie homoidea y

biordinales.

Material examinado: 1 ej., 7-XI1-1988; 1 ej., 20-

XII-1988; 4 ejs., 23-XI1-1988; 2 ejs., 26-XI1-1988;

de Osorno (Provincia de Osorno); 4 ejs., Lebu, 11-

IX-1989; 6 ejs., Lebu, 10-X-1989, (Provincia de

Arauco); 2 ejs., 12-VII-1990, Los Riscos (Provin-

Ibarra y Parra: Estados preimaginales de Eupithecia horismoides 37

HANA,

Figuras 3-7: Estructuras cefálicas de la larva de E. horismoides Rindge. 3 y 5, cabeza en vista lateral y frontal

respectivamente; 5 y 6 mandíbula derecha en vista externa e interna, respectivamente; 7, labrum en vista frontal.

A1-A3: setas cefálicas; ant: antena; clp: clípeo; lbr: labrum; 01-02: setas ocelares; sf: sutura frontal. I, IL, VÍ: ocelos.

cia de Llanquihue); 3 ejs., 13-XI1-1990, Parque

Nacional Laguna del Laja; 1 ej., Lago Mascardi

(Argentina), 31-1-1991; recolectados por H.

Ibarra-Vidal.

PUPA (figs. 9-11): castaño rojiza de 13.9 mm de

alto por 4.8 mm en su ancho máximo. Frente (fig.

9) y clípeo-labro (clp-lbr) subcircular; ojos

pequeños triangulares; espiritrompa (espp) y

pterotecas (ptt) alcanzan la región subterminal

del quinto segmento abdominal, podotecas 2

(pod2) y ceratotecas (cer) llegan a ocupar los 2/

3 anteriores del segmento abdominal 5; fémur (fe)

de las patas anteriores visible; pronoto (prn) en su

región anterior con dos protuberancias centrales

(fig. 10); espiráculos (e) presentes en los segmen-

tos 3 al 9 del abdomen, levemente levantados

formando una especie de cono. En posición dorsal

(figs. 10 y 11) los segmentos 9 y 10 del abdomen

están separados por una ranura dorsal, la cual en

el margen del segmento 10 lleva dos lóbulos;

cremáster (cre) con cuatro pares de setas que

38 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Figura 8: Quetotaxia de la larva de E. horismoides Rindge. D: setas dorsales; L: setas laterales; SD: setas subdorsales;

SV: setas subventrales; V: setas ventrales; XD: setas dorsales extra. 1: Protórax; II: mesotórax; 1,2, 6,8 y 9: segmentos

abdominales 1, 2, 6, 8 y 9.

corresponden a SD1, D1, L1 y D2, el par SD1 son

los más débiles y D2 las más fuertes y esclero-

sadas.

Material examinado: 2 ejs., 26-XII-1988, Osorno;

1 ej., 5-1-1989, Osorno; 1 ej., 30-IX-1990, Laguna

Pineda, Concepción; 1 ej., 23-1-1991, Curacautín

recolectadas por H. Ibarra-Vidal.

Historia Natural

Las observaciones de campo y laboratorio nos

indican que E. horismoides presenta un ciclo de

vida polivoltino, traslapándose diversas genera-

ciones durante primavera y verano cuando las

condiciones ambientales alcanzan un rango

óptimo para su desarrollo (Fig. 12), al igual que

para su hospedador, Gunnera tinctoria, el que se

reduce al tallo rizomatoso durante el período

invernal.

Los huevos son puestos en la superficie a lo largo

de todo el pecíolo, y después de la eclosión la larva

se introduce en él a alimentarse. Durante un

tiempo no determinado la larva va consumiendo

el pecíolo y mudando, quedando una galería con

excretas tras ella. La pupación se produce en la

galería durante la primavera y verano, tras lo cual

salen los imagos por los orificios de salida dejados

por las larvas. Los adultos vuelan alrededor de los

pangues y oviponen poco después.

La oviposición debe ocurrir desde aproxi-

madamente comienzos de agosto y se continúa

con las sucesivas generaciones hasta el mes de

marzo del año siguiente, ya que en todo este

período es posible observar todos los estados. El

estado pupal dura 24 días a temperatura ambien-

tal, durante la primavera y verano.

Durante su etapa larval es parasitado por

igual estado de un microhimenóptero actual-

mente en estudio. Aunque no es de relevancia

económica, es de interés mencionar que existe

desde comienzos de agosto hasta el mes de oc-

tubre de cada año, un transporte de nalcas

(pecíolos comestibles del pangue) desde el sur del

país hacia los centros de consumo de Concepción

y más al norte, y aquellas “con gusanos” dismi-

nuyen su valor comercial. Dichos pecíolos tienen

bastante aceptación en personas de diversos

estratos sociales, no sólo por su sabor sino

también por ciertas propiedades medicinales y

artesanales (Urban, 1934; Muñoz et al., 1981)

Hospedador

Gunnera tinctoria (Mol.) Mirb. (= G.chilensis

Lam.), conocida comúnmente como “pangue”, y

su pecíolo, “nalca”.

Período de vuelo

Desde septiembre a marzo, con períodos de inter-

valo para aparecer durante el invierno, espe-

cialmente a fines de junio y en julio.

Adultos examinados: 1 ej. MZUC, 6-HI-1959, 1 ej.

MZUC, 22-XII-1958; 1 ej., 25-XII-1958; 1 ej.

MZUC, 6-IV-1960; 1 ej. MZUC, 31-1-1961, todos

de Concepción (Provincia de Concepción); 1 ej.,

17-IX-1988; 1 ej., 31-XII-1988; 1 ej., 29-1-1988; 1

Ibarra y Parra: Estados preimaginales de Eupithecia horismoides

y 11

Figuras 9-11: Pupa de E. horismoides Rindge. 9 y 10, pupa en vista frontal y dorsal respectivamente, 11, extremo

terminal de la pupa en vista dorsal. cer: ceratoteca; clp-Ibr: clípeo-labrum; cre: cremáster; e: espiráculo; espp:

espiritrompa; fe: fémur, pod2: podotecas 2; ptt: pteroteca. D: seta dorsal; L: seta lateral; SD: seta subdorsal del

cremáster.

40 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

ADULTO

A] SIN REGISTROS

Figura 12: Registros de los diferentes estados de E. horismoides en el “pangue”, Gunnera tinctora, entre los años

=) ,

1988 y 1990.

ej., 29-VI-1990; 4 ejs., 23-1X-1990 Quilacahuín; 1

ej., X-1987, Pucoihue; 1 ej., 21-X-1990; 1 ej., 30-

XI-1988, Osorno, (Provincia de Osorno); 1 ej., 6-

1-1991; 1 ej., 10-1-1991, Parque Nacional Laguna

del Laja (Provincia de Biobío) colectados por H.

Ibarra-Vidal.

Distribución

Eupithecia horismoides la hemos recolectado

entre Concepción y Osorno, en Chile, y en el lago

Mascardi, Argentina, siguiendo la distribución de

su planta hospedadora, Gunnera tinctoria, que lo

hace desde la provincia de Coquimbo a la de

Magallanes, en Chile y en regiones sureñas adya-

centes de Argentina (Bader, 1961; Muñoz, 1981).

DISCUSION

A pesar de que el género tiene una distribución

casi cosmopolita es muy poco lo publicado sobre

la biología de sus especies. Sólo se ha hecho

mención de algunas plantas hospedadoras y

coloración de estados larvales (Forbes, 19438;

Rindge, 1987).

El género Gunnera, subgénero Panke, tiene

una amplia distribución en Sudamérica con varias

especies (Bader, 1961), por lo que es posible que

otras especies de Eupithecia también se encuen-

tren asociadas a él. No podemos descartar la

posibilidad de un proceso de especiación asociado

a las Gunneráceas y que ocurra un fenómeno de

reemplazo en el rango latitudinal e insular de

distribución de las plantas.

La biología de este lepidóptero está estre-

chamente asociada al pecíolo de la hoja del

pangue, la nalca. Durante el invierno la planta

queda reducida al rizoma por lo que es probable

que la pupa permanezca en el suelo durante esta

etapa. Los imagos que surgen durante el invierno

(julio) provendrían de ellas o de aquellos pangues

que no pierden sus láminas y pecíolos por crecer

en lugares húmedos y protegidos de heladas,

donde el ciclo continuaría más lento debido a las

bajas temperaturas de la estación invernal.

AGRADECIMIENTOS

A Héctor Ibarra Rojas por su colaboración en las

excursiones de recolección en la X Región; al Dr.

Juan Carlos Ortiz, durante cuyas excursiones se

recolectó parte del material; al Dr. Clodomiro

Marticorena por sus aportes bibliográficos; al

personal del laboratorio de Microscopía

Electrónica de nuestra Universidad por su atenta

colaboración en la obtención de las fotografías y

a la Dirección de Investigación de la Universidad

de Concepción (Proyectos 20.38.14 y 92.38.26-1, a

cargo del Prof. Luis E. Parra), por su apoyo

económico.

Ibarra y Parra: Estados preimaginales de Eupithecia horismoides 41

LITERATURA CITADA

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Id»

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 43-48.

ESTUDIO ELECTROFORETICO EN DOS ESPECIES SIMPATRICAS Y SINTOPICAS

DEL GENERO PROCALUS CLARK, 1865 (COLEOPTERA: CHRYSOMELIDAE)

XIMENA CoRTÉS!, VIVIANE R. JEREZ? Y RICARDO GALLEGUILLOS!

RESUMEN

Mediante la técnica electroforética, se examinó la variación enzimática que presentan insectos

de dos especies de crisomélidos, Procalus mutans Blanchard, (1851) y P. reduplicatus Bechyné,

1951 que en forma simultánea son simpátricas en la zona de Hualpén, (36247 lat. S), Concepción,

Chile y sinmtópicas sobre Lithrea caustica (litre).

Sobre un total de 300 individuos se ensayaron 16 sistemas enzimáticos, de los que sólo 8

presentaron actividad: isocitrato deshidrogenasa (Idh), malato deshidrogenasa (Mdh), glucosa 6

fosfato deshidrogenasa (6 Pgdh), aspartato aminotrasnferasa (Aat), leucín aminopeptidasa (Lap),

fosfoglucosa isomerasa (Pgi), fosfoglucomutasa (Pgm) y esterasa-D (Est-d).

Se examinaron 11 loci enzimáticos, de los cuales uno es polimórfico para la enzima Lap-1.

Seis loci diagnóstico permiten separar genéticamente las especies estudiadas.

La estimación del coeficiente de identidad de Nei (1972), 1=0.44 sumado a lo anterior, indicaría

que P. mutans y P. reduplicatus son especies genéticamente distantes y por lo tanto biológica y

taxonómicamente válidas.

ABSTRACT

The isozyme variation in two species of insects, originally identified as Procalus mutans (Blan-

chard, 1851) and P. reduplicatus, Bechyné, 1951 using gel electrophoresis techniques, was used.

This species are sympatric in the Hualpén area, Concepción, Chile (362 47 lat S), and syntopic

on Lithrea caustica. Over a total of 300 specimens, sixteen enzymatic system were surveyed, in

which only eight were succesfully tested: isocitrate dehydrogenase (Idh), malate dehydrogenase

(Mah), glucose 6-phosphate dehydrogenase (6-Pgdh), aspartate aminotransferase (Aat), leucin

aminopeptidase (Lap), phosphoglucose isomerase (Pgi), phosphoglucomutase (Pgm), esterase-

D (Est-d).

Eleven enzyme loci including one loci polimorphic for the enzyme Lap-1 were studied. The

results demostrated the presence of six diagnostic loci, by which the two species can be separated

genetically.

Nef's (1972) genetic identity coefficient was 0,44 (I=0,44) in addition to explained above,

should indicate that these two morphos co-exist in simpatry, share L. caustica as host plant and

belong to biological and taxonomic species.

INTRODUCCION

La aplicación de técnicas electroforéticas para

resolver problemas biosistemáticos ha permitido

determinar el estatus taxonómico de especies que

son difíciles de distinguir por caracteres

IDepto. de Biología Marina, Facultad de Ciencias, U.

Católica de la Santísima Concepción, Prat 88, Talcahuano -

Chile. (Trabajo financiado por Laboratorio de Genética).

2Depto. Zoología, Facultad de Ciencias Biológicas y

Rec. Nat., U. de Concepción, Casilla 2407, Concepción-Chile.

(Proyecto N2 92.38.07 DIUC, Universidad de Concepción).

(Recibido: 4 de agosto de 1992. Aceptado: 29 de octubre

de 1992)

morfológicos de tipo somático (Avise, 1974; Buth,

1984).

Por otra parte, además de ser una herra-

mienta útil para estimar el grado de divergencia

genética entre especies (Hagen y Scriber, 1991),

es posible detectar presencia o ausencia de

hídridos entre poblaciones de especies

simpátricas congenéricas, lo que conlleva al re-

conocimiento de procesos de especiación parcial

o total en taxa cercanamente emparentados

(Hond et al., 1989).

El género Procalus Clark (1865) comprende

un pequeño grupo de especies de insectos, dis-

tribuidas entre los 319 55” S y 36? 47 S, que están

44 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

especializadas tróficamente en especies vegetales

de la familia Anacardiaceae (Jerez, 1985, 1988,

1992), propias de comunidades esclerófilas de la

zona central de Chile.

En la península de Hualpén, VIII Región de

Chile (36? 47 S y 73 10” W), predomina Lithrea

caustica (litre), planta hospedadora de dos espe-

cies de insectos que por sus características

cromáticas han sido determinadas en una primera

aproximación como P. mutans (Blanchard, 1851)

y P. reduplicatus Bechyné, 19531.

Por el hecho de encontrarse en simpatría y

compartir un mismo recurso trófico, se puede

suponer que estamos frente a una población local

de una única especie polimórfica. Este supuesto

se basa en la presencia de patrones cromáticos

característicos del estado adulto y a la ausencia de

diferencias significativas en la amorfología de la

genitalia masculina y femenina ya que su estudio

no ha revelado diferencias significativas que per-

mitan suponer un aislamiento reproductivo entre

ambas especies de insectos (Jerez, 1992). En caso

contrario podría tratarse de dos especies que

cohabitan sobre una misma planta hospedadora.

El presente trabajo tiene por objetivo ca-

racterizar por medio de isoenzimas, estos dos

morfos de insectos congenéricos, simpátricos y

sintópicos nominados como P.mutans y P. redupli-

catus, para determinar sus niveles de

diferenciación genética y contribuir a dilucidar la

correcta identidad de ambos taxa.

MATERIAL Y METODO

En la zona de Hualpén durante los meses de

octubre y noviembre de 1991, se recolectaron

individuos de ambos sexos de P. mutans y P.

reduplicatus, en “litre” (Lithrea caustica).

Los insectos se mantuvieron congelados a

-20? C. hasta el momento de su utilización. Para

cada gel se tomaron 10 individuos de cada morfo,

los que se maceraron, previa extracción de los

élitros y se homogeneizaron con agua destilada.

Posteriormente, mediante la técnica de electro-

foresis horizontal en gel de almidón, se separaron

las aloenzimas de diferentes loci enzimático.

En general, para el análisis electroforético y

selección de antecedentes metodológicos, se

tomaron como base los trabajos de Terranova y

Roach (1987) y Harris y Hopkinson (1976).

En este trabajo se analizaron 16 sistemas

enzimáticos, que en su mayoría han sido detecta-

dos en diferentes órdenes de insectos como

Ephemeroptera (Funk et al., 1988), Homoptera

(Abid et al., 1989), Lepidoptera (Hagen y Scriber,

1991) y Diptera (Brust y Munstermann, 1992).

Comosoluciones tampones se utilizaron Tris.

HCL, pH-8; Trís. HCL pH 7 Lito peas

Poulick. Los geles fueron hechos con almidón

Conaught al 12,5% y los tiempos de corrida

abarcaron de 4 y 5 horas según el sistema consi-

derado. Después de la electroforesis, los geles se

cortaron y tiñeron (de distinta manera para cada

sistema enzimático); posteriormente se incu-

baron a 37” C durante un tiempo variable para

cada sistema enzimático.

Para la designación de loci y alelos, se siguió

la metodología planteada por Allendorf y Utter

(1978). Los patrones de bandeo se enumeran en

orden creciente de acuerdo a su movilidad anodal

y se interpretan como expresiones alélicas. De

este modo entregan información sobre los geno-

tipos y en suma, pueden representar la

composición genética de las poblaciones.

Los loci se consideraron polimórficos, si la

frecuencia del alelo más común es igual o menor

a 0,95 en cualquiera de los dos morfos o pobla-

ciones de insectos.

Para calcular el número de individuos hetero-

cigotos, en ambas poblaciones, los datos

electroforéticos se analizaron utilizando el

método de Fischer (Zar, 1984).

Para cada locus se calcularon los valores de

frecuencias génicas y genotípicas para así, obtener

el porcentaje de heterocigosidad. El test de Chi-

cuadrado se aplicó, con el fin de determinar el

estado de las poblaciones, con respecto al equili-

brio de Hardy-Weinberg.

Para un análisis colectivo de los loci, se usó

la metodología de Nei (1972) mediante la cual se

obtiene un valor de distancia genética e identidad

genética promedio.

RESULTADOS

Para las dos especies, de los 16 sistemas

enzimáticos ensayados sólo ocho exhibieron

buena resolución, los que pueden ser observados

en la Tabla 1, junto con el número de loci codi-

ficados para cada enzima.

Cortés et al.: Estudio electroforético en dos especies de Procalus 45

TABLA 1

P. MUTANS Y P. REDUPLICATUS. ISOENZIMAS CON

MOVILIDAD ELECTROFORÉTICA.

Nombre de la enzima (Abreviación y número de la Comisión

de Enzimas según Harris y Hopkinson, 1976)

Isocitrato deshidrogenasa

Malato deshidrogenasa

Glucosa 6 fosfato deshidrogenasa

Aspartato aminotransferasa

Leucín amino peptidasa

Fosfoglucosa isomerasa

Fosfoglucomutasa

Esterasa-D

Heterocigocidad (Ho y He): La heterocigosi-

dad esperada promedio es para P. mutans de

0,012 mientras que para P. reduplicatus es de

0,029, valores muy bajos, lo que demuestra en este

caso una deficiencia en la heterocigocidad.

Hardy-Weinberg (X?): A partir de las fre-

cuencias alélicas de 11 loci (Tabla 2) y su

aplicación en Hardy-Weinberg, se observa que

ambas especies coexisten bajo una situación de

equilibrio.

Loci diagnóstico: Se determina que de los 11

loci detectados en este estudio, 6 presentan dife-

rencias en la distancia de migración de proteínas,

por lo que se pueden considerar, como loci

O. SECTOR DE MUESTREO

Y . CERRO TETA MONTE

2. CEAD VETA 2

2. ESTIAMO UINSA

Fig. 1. Península de Hualpén. VIII Región. Chile.

Sector de muestreo.

(Idh (1.1.1.37))

(Mdh (1.1.1.37))

(6Pgdh (1.1.1.49)

(Aat (2.6.1.1)

(Lap (3.4.1.1))

(Pgi (5.3.1.8))

(Pgm (2.7.5.1))

(Est-d (3.1.1.1))

N?2 loci Buffer

T.C.7.0

T.C.8.0

INCISO

Poulick

TESTO

T.C.7.0

T.C.8.0

RhhRg9gYbrRp RN

diagnóstico para diferenciar electroforéticamente

ambas especies.

Polimorfismo (P): El único sistema

enzimático que muestra polimorfismo, corres-

ponde a Lap-1, donde los heterocigotos aparecen

con dos bandas, lo que indica la estructura

monomérica de la enzima.

Identidad y Distancia: Para cada locus

enzimático, se determinan valores de distancia

genética (D) e identidad genética (1). Para P.

mutans y P. reduplicatus se calcula una distancia

genética de 0,82 y una identidad genética de 0,44.

Del total de loci, se observa que sólo uno es

polimórfico para P. mutans y P. reduplicatus, y

corresponde a la enzima Lap en su primer locus

(Tabla 3). Para ambas especies se calcula un

promedio de polimorfismo de 0,09.

DISCUSION

El análisis electroforético mostró variación

isoenzimática en 6 sistemas, los que pueden

considerarse como loci diagnóstico; al respecto

debemos señalar que estos loci han demostrado

ser una buena herramienta para verificar aisla-

miento reproductivo en poblaciones simpátricas

de otros invertebrados, como sucede por ejemplo

con especies decrustáceos delifeénero

Liopetrolisthes (Weber y Galleguillos, 1991).

Del cálculo de las frecuencias alélicas, cuyo

rango fluctúa entre O a 1 se estima el grado de

desviación del equilibrio de Hardy-Weinberg que

presentan los individuos determinados como P.

mutans y P. reduplicatus, concluyendo que ambas

46 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

TABLA 2.

FRECUENCIAS ALÉLICAS, DISTANCIA E IDENTIDAD GENÉTICA EN 11

LOCI DE P. MUTANS Y P. REDUPLICATUS.

Locus Variante Frecuencia alélica Identidad Distancia

mutans reduplicatus

Idh-1 100 1 1 1 0

Idh-2 100 0 1

0 pS

95 1 0

Mdh-1 100 1 1 1 0

6 Pgdh-1 100 0 1

0 e

95 1 0

Aat-1 105 1 0

0 sE

100 0 il

Lap-1 105 0 0,2

100 0,93 0,8 0,97 0,03

95 0,07 0

Lap-2 100 0 1

0 Ys

95 1 0

Lap-3 100 1 1 1 0

Pgi-1 100 1 1 1 0

Pgm-1 100 0 1

0 ra

95 1 0

Est-d-1 105 1 0

0 de

100 0 1

especies coexisten en el sitio de estudio bajo una

situación de equilibrio.

Con respecto a la identidad genética que

existe entre organismos que comparten una histo-

ria evolutiva común, autores como Oxford y

Rollinson (1983), Davis (1983) y Hagen y Scriber

(1991), han estimado que si las poblaciones ani-

males presentan una identidad genética que oscile

entre 0.25 a 0.98, pueden ser consideradas como

especies biológicamente válidas. Así por ejemplo,

Bloem (1991) trabajando con dípteros del género

Aedes, considera a Aedes varipalpus como una

especie muy alejada del resto de sus congéneres

por el hecho de presentar una distancia genética

de 0,52. Por otro lado, Hagen y Seriber (1991), en

Lepidoptera reconocen a Papilio glaucus y Papilio

canadensis, como dos especies, con un valor de

identidad genética de 0,86.

En el presente estudio se determinó para LE

mutans y P. reduplicatus una identidad genética de

0.44 lo que indica la existencia de 44% de genes

idénticos en las dos poblaciones, y un 82% de

Cortés et al.: Estudio electroforético en dos especies de Procalus 47

TABLA 3.

P. MUTANS Y P. REDUPLICATUS. GRADO

DE POLIMORFISMO EN UN LOCUS DE

LA ENZIMA LAP.

Población N? loci Polimorfismo

polimórfico totales

P. mutans 1 11 0,09

P. reduplicatus 1 11 0,09

Total il 11 x = 0,09

sustituciones alélicas por locus.

Dentro de las isoenzimas estudiadas, se

observa que Lap-1 es el único locus polimórfico

entre 11 loci presentes en ambas especies, por lo

cual P. mutans y P. reduplicatus presentan un

mismo grado de variabilidad genética con un

promedio de polimorfismo igual a 0,09.

El número de individuos heterocigotos obser-

vados para la enzima Lap-1 en ambas especies es

muy bajo, pese a esto son factibles cálculos que

permiten asegurar que estos individuos no difie-

ren significativamente en número entre una

población y otra.

El promedio de heterocigosidad observada y

esperada en ambas poblaciones, es muy pequeño

e inclusive menor que el encontrado por Funk et

al.. (1988) para Ephemeroptera del género Eu-

rylophella, donde el promedio de heterocigosidad

esperada es de 0,11. En nuestro caso, lo anterior

podría deberse al tamaño de las muestras anali-

zadas las que tal vezno sean representativas de las

poblaciones.

Las significativas diferencias en las frecuen-

cias alélicas de ambas especies, el bajo valor de

identidad genética, y la evidente ausencia de

híbridos entre ellas, nos permite vislumbrar la

existencia de una barrera al flujo génico entre

ambos taxa.

Esto último es una prueba suficiente para

definir la existencia de 2 especies taxonómicas y

biológicamente válidas, asociadas a una misma

especie de planta hospedadora.

A pesar del hecho que P. mutans y P. redupli-

catus coexisten en la actualidad en una misma

área geográfica y comparten el mismo recurso

trófico, la extrema disimilitud genética encon-

trada entre ambas especies permite suponer que

ellas no tendrían una historia evolutiva común o

bien, que los mecanismos de aislamiento repro-

ductivo han sido establecidos por factores

extrínsecos a ellas.

Debemos señalar que se trabajó con indivi-

duos adultos, por lo que los resultados obtenidos

consideran únicamente características imaginales

y no ontogenéticas.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos muy especialmente a la Srta.

Marcela Astorga, por sus consejos; al Sr. Hernán

Cortés y John Sanhueza por su ayuda en la

recolección de muestras; al Sr. Peter Lewis por la

traducción del resumen y a todos los que de una

u otra forma hicieron posible el cumplimiento del

presente trabajo.

LITERATURA CITADA

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INVERTEBRADOS ASOCIADOS A SUELO EN BOSQUE DE NOTHOFAGUS PUMILIO

(POEPP. ET ENDL.) KRASSER, XII REGION - CHILE, CON ESPECIAL

REFERENCIA A INSECTA'

Mario ELcueEra D.?

RESUMEN

Se estudia la composición de la fauna de invertebrados, con especial referencia a Insecta, presente

en el estrato superficial de un bosque de Nothofagus pumilio (“lenga”); el estudio se basa en el

análisis de 48 muestras, tomadas utilizando trampas Barber, a lo largo de un ciclo anual.

Resaltan como grupos importantes en el sistema, por su abundancia y constancia, Arachnida,

Collembola e Insecta.

A nivel de familia aparece como dominante absoluto Mycetophilidae, con una abundancia

relativa cercana al 80% y una constancia superior al 90%; con menores valores aparecen

Diapriidae, Lygaeidae y Staphylinidae. Se destaca la presencia de adultos de los grupos domi-

nantes, a través de todo el año.

En forma general, los resultados obtenidos concuerdan con aquellos de estudios previos,

respecto de la composición entomofaunística del estrato superficial del bosque de lenga.

ABSTRACT

Faunistic composition of invertebrates, with special reference to Insecta, in a superficial stratum

of Nothofagus pumilio (“lenga”) forest is studied. Fourty eight pit-fall traps samples along an

annual cycle are analyzed.

Considering relative abundance and constancy, the most important groups in the system are:

Arachnida, Collembola and Insecta. At family level emerges as absolute dominant Mycetophili-

dae, with a relative abundance close to 80% and constancy up to 90%; with minor values appear

Diapriidae, Lygaeidae and Staphylinidae. Adults presence belonging to dominant groups along

the whole year is remarked.

In a broad sense results are according with others previously published informations, related

with the entomofaunistic composition of superficial stratum of Nothofagus pumilio forest.

INTRODUCCION

Nothofagus pumilio (Poepp. € Endl.) Krasser,

llamada localmente “lenga”, se distribuye en

Chile aproximadamente desde los 35% 30” S

(Cordillera de los Andes) hasta el extremo Sur del

continente; a medida que se avanza en latitud, se

ITrabajo financiado por United Nations, PNUMA-

CONAF Project FP/4101-8301(PP/2314). Proyecto de

monitoreo integrado en el P.N. Torres del Paine.

¿Sección Entomología, Museo Nacional de Historia

Natural, Casilla 787, Santiago - Chile

(Recibido: 14 de agosto de 1992. Aceptado: 30 de marzo

de 1993)

distribuye en zonas más bajas, encontrándose en

Magallanes hasta el nivel del mar.

Este tipo de bosque deciduo ha sido poco

estudiado, desde el punto de vista de su fauna

asociada de invertebrados; así por ejemplo, los

insectos presentes en los bosques de la XII

Región, son conocidos fundamentalmente a

través de descripciones taxonómicas, efectuadas

por distintos autores y publicadas en una diversi-

dad de obras.

Cabe mencionar que para la fauna de inverte-

brados de bosques magallánicos de lenga, a nivel

supraespecífico, se conocen los aportes de

S0 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Lanfranco (1977) y Covarrubias (1989); el

primero de ellos relativo a insectos en una

situación estacional, con recolecciones en estrato

suelo-superficie y aéreo, y el segundo referente a

la fauna de Acarina y Collembola, a través de un

ciclo anual.

A nivel específico se deben destacar los

aportes de Duret (1977), correspondiente a

Mycetophilidae (Diptera) recolectados en el estu-

dio de Lanfranco (op. cit. ), y el de Niemelá (1990)

sobre Carabidae (Coleoptera) en un gradiente

fitogeográfico, con colectas en época de verano,

que incluye el bosque de lenga. También se en-

cuentran en desarrollo otros estudios sobre in-

vertebrados magallánicos, presentes en distintos

ambientes (incluido bosques de Nothofagus),

basados asimismo en material colectado en

período estival (La Greca, 1991).

Desde esta perspectiva, escaso conocimiento

de los grupos presentes y de sus probables modi-

ficaciones a lo largo del año, reviste interés al

conocer los taxa asociados a este tipo de sistemas

forestales, evaluando su importancia a partir de la

determinación de algunos parámetros biológicos

(i.e.: abundancia relativa, constancia).

Considerando lo anterior, los objetivos del

presente trabajo fueron el de reunir información

de carácter básico, tanto en lo relativo al recono-

cimiento de los taxa presentes, como en las

modificaciones experimentadas por ellos en un

ciclo anual. Como una primera aproximación y

debido a dificultades taxonómicas, el recono-

cimiento se efectuará a nivel de familia.

Para el logro de los objetivos señalados, se

programó una serie de muestreos en un bosque de

Nothofagus pumilio, ubicado en el sector cono-

cido localmente como “El Pingo”, distante unos

7 km al NW de la Guardería del Lago Grey

(cercano a los 512 05 S, 732 10” W). al interior del

Parque Nacional y Reserva de la Biósfera “Torres

del Paine”.

La descripción de este bosque, así como los

suelos sobre los cuales se asienta, ha sido efec-

tuada previamente por Covarrubias (1989);

asimismo, una descripción general de este tipo de

bosque, se puede encontrar en un aporte de

Pisano (1974).

En cuanto a clima, el área se ubica en la zona

de tendencia oceánica con características de

aridez (Di Castri y Hajek, 1976), con precipi-

taciones anuales estimadas del orden de 800 a 850

mm (Pisano, op. cit.).

MATERIALES Y METODO

Se instalaron 4 trampas Barber (pit-fall traps), a

partir del 11 de noviembre de 1985, conteniendo

una solución de formalina al 5%, en lugares

escogidos al azar al interior del bosque; se uti-

lizaron como trampas, envases plásticos de

aproximadamente 10 cm de diámetro por 10 cm

de profundidad. Cada trampa permaneció en te-

rreno por un lapso aproximado de 30 días, tiempo

después del cual fueron removidas recogiéndose

su contenido, renovando la solución de formalina

y ubicándolas nuevamente en su lugar original; se

operó de esta misma forma hasta completar un

ciclo anual, con una réplica adicional.

Las fechas en que se efectuaron las re-

colecciones del contenido de las trampas, son las

siguientes (en paréntesis se indica el mes como es

tratada la muestra en los análisis de datos):

1985 8 de diciembre (noviembre, 1985)

1986 10 de enero (diciembre, 1985)

14 de febrero (enero, 1986)

9 de marzo (febrero)

9 de abril (marzo)

10 de mayo (abril)

12 de junio (mayo)

10 de julio (junio)

11 de agosto Gulio)

8 de septiembre (agosto)

11 de octubre (septiembre)

10 de noviembre (octubre)

9 de diciembre (noviembre)

Cabe señalar que el material de 4 trampas se

perdió por diversas razones (lavado por lluvia,

hongos), motivo por el cual la cifra total de

muestras analizadas en el ciclo anual es de 48.

El material reunido fue analizado en el

Laboratorio de la Sección Entomología del

Museo Nacional de Historia Natural (Santiago,

Chile), lugar en el cual se encuentra depositado,

utilizándose para tal fin lupas Bausch £ Lomb.

Los ejemplares recolectados en cada muestreo,

fueron identificados a nivel de familia; para

algunos de ellos no fue posible su identificación

razón por la cual se presentan como grandes

grupos (orden o bien como “no determinados”).

Para el análisis de la importancia de los

grupos encontrados, se utilizaron los siguientes

índices:

- Abundancia relativa (expresada como

porcentaje respecto del total mensual o del

Elgueta: Invertebrados en suelo de bosque de Nothofagus pumilio S1

ciclo anual)

- Constancia (número de presencias de cada

taxón, en el total de muestras y meses

muestreados)

- — Promedio de ejemplares capturados de cada

grupo, por muestra y por mes.

Al fin de hacer comparables los resultados,

con aquellos obtenidos en otros ambientes

(Lanfranco, 1977; Solervicens y Elgueta, 1989), en

este caso se consideraron como grupos importan-

tes, dominantes, a aquellos cuya constancia era

superior o igual al 50%, su abundancia relativa

mayor o igual al 1% y con un promedio de ejem-

plares capturados (por muestra, por mes) mayor

o igual a 1; se consideraron asimismo como

grupos complementarios, a todos aquellos que

cumplieron con los requisitos de dos de los tres

índices en la forma detallada precedentemente.

Es necesario destacar que aunque el método

de muestreo utilizado (trampas Barber) tiene

evidentes limitaciones, se reconoce que los valo-

res absolutos de densidad, en muestreos suelo-

superficie, permiten comparaciones entre sitios

(Southwood, 1966; Cameron 8: Butcher, 1979).

RESULTADOS Y DISCUSION

En Tabla 1 se entrega información de capturas de

invertebrados según mes, a nivel de grandes

grupos; se aprecia que esta fauna está constituida

principalmente por artrópodos de los grupos

Arachnida, Collembola e Insecta. Con cifras altas

aparece también Annelida, aunque su presencia

debe ser considerada accidental, dado el método

de muestreo utilizado.

Se debe señalar que los análisis del presente

aporte se centrarán, fundamentalmente, en los

resultados obtenidos para Insecta, en

consideración a que existe un trabajo previo

(Covarrubias, 1989) referido especialmente a

Collembola y Acarina, presentes en distintos

sustratos (incluidos suelo y hojarasca) del mismo

bosque; por esta razón no se indican aquí, canti-

dad de ejemplares capturados de dichos grupos.

No obstante lo anterior, es posible señalar

que Acarina alcanza un total de capturas cercano

a un 10% adicional, al cual contribuye Oribatei

con un 2,3%, y Collembola un 13% adicional

sobre el total registrado en Tabla 1; estos valores

son diferentes de aquellos obtenidos por Covar-

rubias (op. cit.), atribuyéndose dicha diferencia al

distinto método de muestreo empleado en cada

caso.

Resalta la enorme contribución de Insecta al

total de ejemplares capturados, evidenciándose

claramente que Diptera es el grupo con más alta

incidencia en las capturas; destacan asimismo los

órdenes Hymenoptera, Coleoptera y Hemiptera.

Se aprecia en consecuencia que la fauna de insec-

tos, en el estrato suelo-superficie de bosque de

Nothofagus pumilio, está constituida mayorita-

riamente por dípteros y secundariamente por

himenópteros, coleópteros y hemípteros.

Al examinar los registros mensuales de cap-

tura, se observa que no existe un patrón claro,

uniforme, de disminución de los valores de den-

sidad, hacia los meses hipotéticamente menos

favorables en cuanto a clima, para los grupos

encontrados; por el contrario los datos sugieren,

al menos para algunos de ellos, la existencia de

ciclos de corta duración, que se repiten a lo largo

del año.

En este contexto es interesante destacar los

altos valores de captura alcanzados por algunos

órdenes de Insecta, en Primavera, Otoño e In-

vierno, además de su persistencia a lo largo del

ciclo anual; lo anterior es también apreciable, al

considerar la contribución porcentual de cada

mes al total, observándose valores significativos

en noviembre-diciembre (1985), abril-mayo y

agosto-septiembre (1986).

En relación al régimen climático imperante

en el área en estudio, no se dispone de anteceden-

tes; el Parque Nacional Torres del Paine se ubica

en la zona de tendencia oceánica, específicamente

en la franja oriental de dicha zona, con

características de aridez (Di Castri y Hajek, 1976).

La falta de mediciones de parámetros

climáticos, a través de muchos años, no permiten

efectuar un análisis crítico de la posible corres-

pondencia entre ellos y las mediciones biológicas,

en este caso densidades de captura. Sin embargo

existen algunos antecedentes publicados por

Pisano (1974), basados en mediciones incomple-

tas efectuadas en un corto número de años, para

otros puntos del Parque presuntamente homol-

ogables, los cuales permiten notar en forma

general que:

- las mayores precipitaciones se producen en

los meses de marzo a mayo, en especial en

este último mes,

- — dependiendo de la zona, hay también precipi-

taciones importantes hacia agosto-sep-

Rev. Chilena Ent. 20, 1993

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Elgueta: Invertebrados en suelo de bosque de Nothofagus pumilio S3

tiembre y diciembre-enero,

- con alguna variación, las menores precipi-

taciones ocurren en octubre-noviembre,

- — las temperaturas más bajas se producen en

los meses de mayo a septiembre, con valores

mínimos en junio,

- — la amplitud térmica tiene un rango de 152 C

a 242 C, con valores menores en invierno y

mayores en el período estival,

- se produciría un superávit hídrico, precipi-

taciones mayores que evaporación, entre

marzo y agosto,

- de acuerdo a valores estimados, las precipi-

taciones en el sector en que se ubica el bosque

estudiado, alcanzarían la cifra anual de 800 a

850 mm.

Estos antecedentes, tomados con el debido

cuidado dada la heterogeneidad ambiental del

Parque, producto de la presencia de grandes

lagos, glaciares y altas cumbres, entre otros fac-

tores, además de que representan mediciones

incompletas, sugieren una posible corresponden-

cia entre variaciones de factores climáticos, espe-

cialmente precipitaciones, y las variaciones en-

contradas en las densidades de algunos grupos.

En este caso aumento de precipitaciones irían

acompañadas de aumentos en las capturas de, al

menos, Diptera.

En Tabla 2 se entregan los valores de los

índices escogidos, a nivel de grandes grupos; del

análisis de estos datos resaltan como importantes

Annelida, Araneae, Acarina, Collembola y, en

escala de importancia decreciente dentro de los

insectos, los Órdenes: Diptera, Hymenoptera,

Coleoptera y Hemiptera. Revisten además cierto

interés, con grupos accesorios, Pseudoscorpi-

onida, Neuroptera y Lepidoptera, los dos

primeros (al igual que Araneae) de actividad

eminentemente depredadora.

Destaca la baja e insignificante contribución

de Isopoda al total de capturas considerando que

este grupo, junto a Diplopoda ausente en esta

situación, cumple un importante rol en otros sis-

temas como fragmentadores y descomponedores

de hojarasca (Covarrubias, 1989).

En lo que se refiere a insectos estos resulta-

dos son claramente distintos respecto a la

composición entomofaunística en otros sistemas,

tales como follaje de plantas (Solervicens y

Elgueta, 1989), en donde otros grupos son los

dominantes; por otro lado son similares aunque

no totalmente coincidentes, con resultados de un

estudio anterior (Lanfranco, 1977) en bosque de

Nothofagus pumilio.

En atención a lo anterior y a fin de visualizar

qué grupos dentro de Insecta tienen una

ponderación importante, tanto en el total como en

los registros parciales a lo largo del ciclo anual, se

entregan en Tabla 3 los valores mensuales de

captura a nivel de Orden y Familia (considerando

adultos y larvas, según corresponda). La

observación de estos datos evidencia la persisten-

cia a lo largo del año y la gran contribución de

unas pocas familias, las cuales son (según orden

de importancia): Mycetophilidae, Diapriidae,

Lygaeidae y Staphylinidae; en el caso de Scara-

baeidae, aun cuando exhibe un total alto, su

constancia a través del año es menor.

Merecen destacarse por una alta persistencia,

aunque con abundancias menores, a Phoridae,

Sciaridae y Curculionidae, además de los grupos

“larvas de Diptera” y “larvas de Coleoptera”.

La mayoría de los grupos antes señalados no

parecen obedecer a un patrón estacional en su

aparición; en contraposición se presentan otras

familias, tales como Scarabaeidae (con un alto

número de individuos) y Protocucujidae, con

evidente distribución estacional de los adultos,

encontrándose estos entre septiembre y marzo,

meses más favorables en cuanto a clima.

En Tabla 4 se detallan, para los grupos de

Insecta, los valores de los índices utilizados; estos

datos nos muestran como grupos dominantes a

Mycetophilidae y, muy atrás, Diapriidae,

Lygaeidae, Staphylinidae, el conjunto de larvas de

Diptera y Scarabacidae, aunque en este último

caso la constancia muestral es bastante baja.

Atendiendo a su contribución al total de

Insecta (abundancia relativa) y a su persistencia

en el tiempo (constancia mensual), con las consid-

eraciones que más adelante se señalan, los grupos

pueden ser catalogados de la siguiente forma:

- Constantes: Mycetophilidae, Diapriidae,

Lygacidae, Larvas de Diptera, Staphylinidae

y Scarabaeidae.

- Accesorios: Phoridae, Sciaridae, Protocu-

cujidae, Curculionidae, Larvas de Coleop-

tera, Lepidoptera y Carabidae.

- Accidentales: Peloridiidae, Cicadellidae,

Psyllidae, Aphidiidae, Pentatomoidea, Thy-

sanoptera, Neuroptera, Scaphidiidae, Pse-

laphidae, Lucanidae, Byrrhidae, Elateridae,

Melyridae, Nitidulidae, Cryptophagidae, Oe-

demeridae, Cerambycidae, Tipulidae, Bibio-

54 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

TABLA 2

ABUNDANCIA RELATIVA, CONSTANCIA Y PROMEDIO DE EJEMPLARES, POR

MUESTRAS Y POR MES, DE LOS GRUPOS DE INVERTEBRADOS REGISTRADOS

Hymenoptera 869 4,92

Indice Número Abundancia

de relativa

grupo ejemplares (%)

Annelida 544 3,08

Nematoda Jl 0,01

Crustacea (Isopoda) 2 0,01

Arachnida:

Pseudoscorpionida 29 0,16

Opilionida 1 0,01

Acarina (resto) N/E N/E

Oribatei N/E N/E

Araneae 348 1,97

Collembola:

Poduroidea N/E N/E

Entomobryoidea N/E N/E

Symphypleona N/E N/E

Insecta:

Psocoptera 1 0,01

Hemiptera 293 1,66

Thysanoptera 5 0,03

Neuroptera (*) 17 0,10

Coleoptera (*) 650 3,68

Diptera (*) 14.823 83,99

Lepidoptera (*) 65 0,37

Total 17.648

(*) = considera larvas y adultos

N/E = valores no estimados

nidae, Stratiomyidae HEmpididae, Anth-

omyiidae, Tachinidae, Ichneumonidae y

Scelionidae.

Para el caso de Scarabaeidae, considerando

que los adultos capturados corresponden a espe-

cies del género Sericoides, de acuerdo a los ante-

cedentes biológicos conocidos que asocian los

adultos de esta familia a follaje de plantas

(Elgueta y Arriagada, 1989), este grupo debe ser

considerado mas bien como accidental (en su

estado adulto) en el estrato superficial del bosque

de lenga y su presencia en los meses de primavera-

verano, quizás corresponda a muerte de adultos

Constancia Promedio de ejemplares

muestras mes muestra mes

64,58 92,31 11,33 41,85

2,08 7,69 0,02 0,08

4,17 15,39 0,04 0,15

33,33 61,54 0,60 2,23

2,08 7,69 0,02 0,08

91,67 100,00 N/E N/E

56,25 76,92 N/E N/E

75,00 100,00 7,25 26,17

81,25 100,00 N/E N/E

66,67 100,00 N/E N/E

50,00 69,23 N/E N/E

2,08 7,69 0,02 0,08

83,33 100,00 6,10 22,54

8,33 23,08 0,10 0,39

16,67 38,46 0,35 JESiL

87,50 100,00 13,54 50,00

93,75 100,00 308,81 1.140,23

64,58 84,62 1,35 5,00

85,42 100,00 18,10 66,85

367,67 1.357,54

una vez concluido su ciclo reproductivo y/o caída

desde el follaje por efecto del viento.

Protocucujidae, a pesar de su alta constancia

mensual que la hace aparecer como accesoria, en

atención a su estrecha asociación con follaje de

Nothofagus, debe ser considerada como acciden-

tal y su presencia en los muestreos puede ser

atribuida a efecto del viento. Esta familia ha sido

citada previamente hasta la XI Región (Elgueta y

Arriagada, op. cit.), estos registros amplían su

presencia hasta la XII Región.

En el caso de Psyllidae, grupo fitófago

alimentándose a nivel de floema, las capturas

Elgueta: Invertebrados en suelo de bosque de Nothofagus pumilio

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S6 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

TABLA 4

ABUNDANCIA RELATIVA, CONSTANCIA Y PROMEDIO DE EJEMPLARES, POR

MUESTRA Y POR MES, DE LOS GRUPOS DE INSECTA REGISTRADOS.

Indice Número Abundancia Constancia Promedio de ejemplares

de relativa

grupo ejemplares (%) muestras mes muestra mes

Psocoptera 1 0,01 2,08 7,69 0,02 0,08

Peloridiidae 1 0,01 2,08 7,69 0,02 0,08

Cicadellidae 4 0,02 6,25 15,39 0,08 0,31

Psyllidae 11 0,07 18,75 53,85 0,23 0,85

Aphididae 11 0,07 18,75 53,85 0,23 0,85

Lygaeidae 223 1,33 72,92 100,00 4,65 17M

Pentatomoidea 43 0,26 20,83 46,15 0,90 3,31

Thysanoptera 5) 0,03 8,33 23,08 0,10 0,39

Neuroptera (*) il 0,10 16,67 38,46 0,35 JLSil

Coleoptera (larvas) 49 0,29 43,75 76,92 1,02 33

Carabidae 26 0,15 25,00 53,85 0,54 2,00

Scaphidiidae 4 0,02 8,33 15,39 0,08 0,31

Staphylinidae 174 1,04 54,17 76,92 3,63 13,39

Pselaphidae 6 0,03 10,42 SO 0,13 0,46

Lucanidae il 0,01 2,08 7,69 0,02 0,08

Scarabaeidae 209 125 29,17 53,85 4,35 16,08

Byrrhidae 3 0,02 6,25 23,08 0,06 0,23

Elateridae 12 0,07 10,42 23,08 0,25 0,92

Melyridae 1 0,01 2,08 7,69 0,02 0,08

Nitidulidae 1 0,01 2,08 7,69 0,02 0,08

Protocucujidae 97 0,58 29,17 53,85 2,02 7,46

Cryptophagidae 3 0,02 4,17 MAGO 0,06 0,23

Oedemeridae 3 0,02 6,25 23,08 0,06 0,23

Cerambycidae 1 0,01 2,08 7,69 0,02 0,08

Curculionidae 60 0,36 41,67 76,92 1025 4,62

Diptera (larvas) 72 1,03 54,17 92,31 3,58 13,23

Tipulidae 12 0,07 20,83 30,77 0,25 0,92

Bibionidae 2 0,01 4,17 15,39 0,04 0,15

Sciaridac 87 0,52 43,75 69,23 1,81 6,69

Mycetophilidae 14.006 83,75 93,75 100,0 293,04 1.082,00

Stratiomyidae 1 0,01 2,08 7,69 0,02 0,08

Empididae 3 0,02 2,08 7,69 0,06 0,23

Phoridae 97 0,58 41,67 92,31 2,02 7,46

Anthomyiidae 36 0,21 12,50 23,08 0,75 Ze

Tachinidae 3 0,02 4,17 15,39 0,06 0,23

Lepidoptera (*) 65 0,39 64,58 84,62 1,35 5,00

Ichneumonidae 9 0,05 12,50 23,08 0,19 0,69

Scelionidae 10 0,07 20,83 38,46 0,25 0,92

Diapriidae 807 4,82 83,33 100,00 16,81 62,08

No determinados 41 0,24 35,42 13199) 0,85 3,15

Total 16.723 348,39 1.286,38

(*) = considera larvas y adultos

Elgueta: Invertebrados en suelo de bosque de Nothofagus pumilio

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58 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

corresponden a ejemplares de Zonopelma austra-

lis Burckhardt y Nothophorina darwini Burck-

hardt, especies asociadas a Nothofagus,

específicamente a N. pumilio en el último caso

(Burckhardt, 1987 a y b); considerando lo ante-

rior, la presencia de este grupo (al igual que la de

Aphidiidae) es efectivamente accidental y debería

corresponder a efecto del viento.

En atención alas fluctuaciones mensuales del

total de insectos capturados y a fin de tener una

visión más acorde con la realidad biológica, se

entrega en Tabla 5 la abundancia relativa mensual

para los grupos que en un primer análisis, de

acuerdo alos índices utilizados (datos de Tabla 4),

aparecen como constantes o accesorios.

De la observación de esos valores resalta

nítidamente la alta y relativamente constante

contribución de Mycetophilidae, lo cual sugiere

que esta familia está cumpliendo un rol impor-

tante en el sustrato superficial del bosque de

lenga; cabe reiterar para este grupo, al igual que

en el caso de Diapriidae y Lygaeidae, la presencia

significativa de adultos a lo largo de todo el año.

Lo anterior sugiere que probablemente los

adultos de Mycetophilidae se desplazan muy

poco, al respecto ya se ha indicado previamente

(Duret, 1977) la existencia de al menos una espe-

cie con alas reducidas, y que debe haber un reem-

plazo de especies a lo largo del ciclo anual, unido

quizás a una gran persistencia por parte de

algunas. Esto sólo podrá clarificarse mediante

estudios en terreno o con material vivo y el análisis

anivel específico de los ejemplares capturados; en

todo caso puede señalarse, para apoyar parte de

los antes indicado, que una de las especies invo-

lucradas, que contribuye en más del 6% al total

registrado, aparece exclusivamente en los

muestreos correspondientes a meses menos fa-

vorables en cuanto a clima, no habiéndose captu-

rado adultos en los meses de noviembre a marzo.

Respecto a este último punto, previamente se

había sugerido una ausencia de adultos de esta

familia en los meses de invierno (Duret, op. cit.).

En contraposición a lo anterior, es con-

veniente destacar la estacionalidad de grupos

como Scarabacidae, Protocucujidae y Curcu-

lionidae, con capturas concentradas en primav-

era; para el caso de Curculionidae una fracción

importante de los adultos colectados, corres-

ponde a Dasydema hirtella Blanchard, especie

asociada a follaje de Nothofagus.

Respecto al posible rol ecológico de Myceto-

philidae, es dable pensar en una participación

activa en el proceso de fragmentación de material

vegetal; lo anterior tiene sentido si se tiene en

cuenta lo delgado de la capa de hojarasca en el

bosque estudiado, la nula contribución de Isopoda

y ausencia de Diplopoda y, por último, las

características biológicas de la familia, la cual

incluye especies con larvas saprófagas de ocurren-

cia ordinaria en suelos ricos en materia orgánica

en proceso de descomposición. Tanto Myceto-

philidae como Sciaridae y Phoridae, otras dos

familias de Díptera que tienen alguna importan-

cia en el sistema estudiado y con relaciones ev-

identes entre ellas, muestran similitud en su

hábitat (Séguy, 1951; Colles y McAlpine, 1991).

Por otra parte y en atención a los anteceden-

tes biológicos conocidos para Diapriidae (Nau-

mann, 1982 y 1991), se debe señalar que la persis-

tencia anual y abundancia de este grupo, está en

estrecha relación con lo observado para Myceto-

philidae, al ser estos últimos, en su estado pupal

o prepupal, hospedadores de los primeros.

También se destaca la alta contribución del

grupo Larvas de Diptera en el período de otoño,

meses de marzo y junio, que preceden alzas

importantes de Mycetophilidae en meses inme-

diatamente posteriores.

En el caso de Lygacidae, se tiene anteceden-

tes de la presencia de especies semilleras,

fitófagas y predadoras (Carver et al., 1991), razón

por la cual no es posible concluir en definitiva

acerca de su rol.

Como registro curioso dentro del material

recolectado, pueden destacarse:

a) Presencia de un representante de la tribu

Baeini (Hymenoptera: Scelionidae: Scelion-

inae) la cual, según los antecedentes de que

se dispone, no ha sido reportada previamente

para Chile; dentro de este grupo son frecuen-

tes las hembras ápteras, cual es el caso aquí

registrado, y que parasitan huevos de arañas

(Naumann, 1991).

b) Registro de Peloridium hammoniorum Bred-

din, de la familia Peloridiidae (Homóptera),

representantes los cuales viven en musgos

húmedos de bosques lluviosos temperados y

subantárticos (Burckhardt y Agosti, 1991).

c) Todos los ejemplares de Byrrhidae corre-

sponden a la especie Pachymys puberulus

(Fairmaire), propia del extremo austral.

En relación a estos sistemas, se ha postulado

previamente (Lanfranco, 1977) que este tipo de

Elgueta: Invertebrados en suelo de bosque de Nothofagus pumilio S9

bosque, con su biota acompañante constituye una

comunidad evolutivamente poco madura some-

tida supuestamente a variaciones, tanto estacio-

nales como anuales, y con una estabilidad relativa.

Asimismo se considera a la vegetación

magallánica, en cuanto a su distribución actual

relativamente nueva; esto por el hecho de estar

asentada en sustratos geológicamente recientes y

por tener un porcentaje importante de inmigran-

tes de otras latitudes (Pisano, 1975 y 1991).

Los resultados obtenidos en este estudio

comprueban una variación estacional, aún cuando

no en la forma en que es entendida habitualmente

(í. e: máxima actividad biológica en período esti-

val y mínima en invierno); lo que aquí se encuen-

traes que se registran máximos valores de captura

en distintas épocas del año: Otoño, Invierno y Pri-

mavera. Las posibles variaciones anuales sólo

podrán comprobarse, con estudios dirigidos en tal

sentido.

Por otra parte, la presencia importante a

través de todo el ciclo anual, de grupos que

conforman una relación parásito - hospedador y

la aparición exclusiva, con una alta densidad en el

período climático más desfavorable de al menos

una especie (Mycetophilidae), sugiere una

estructuración comunitaria bastante antigua. Así

los elementos asociados a este tipo de bosque,

entomofauna acompañante por ejemplo, pudi-

eron establecerse y diferenciarse en otras lati-

tudes o áreas geográficas (i. e.: refugios)

distribuyéndose desde ahí a los nuevos ambientes

disponibles.

Es claro que existe una falta de estudios de

este tipo para profundizar más en relación a esta

problemática. Respecto a esto, para fines com-

parativos válidos, se debería examinar lo que

ocurre con el mismo sistema (bosque de Notho-

fagus pumilio) en otras latitudes, o bien con sis-

temas forestales homologables (clima, historia

geológica, etc.) ubicados en otras áreas

geográficas; esto debido a que se piensa que

cualquier comparación con sistemas no

homólogos, podría reflejar diferencias que lleven

a interpretaciones no válidas: sistemas distintos

pueden tener historias y factores limitantes distin-

tos.

CONCLUSIONES

Basados en los resultados del análisis de 48

muestras tomadas a lo largo de un ciclo anual, en

el estrato superficial de un bosque de Nothofagus

pumilio, se encuentra que:

1. Están presentes Annelida, Nematoda y,

dentro de Arthropoda, Crustacea, Arach-

nida, Collembola e Insecta; este último grupo

contribuye en cerca de un 95% al total de

ejemplares capturados. Efectúan con-

tribuciones importantes, aunque no detalla-

damente evaluadas, Collembola con aproxi-

madamente un 13% adicional sobre el total y

Acarina (Arachnida), con un valor adicional

estimado del 12%.

2. La representación de Insecta comprende 8

Ordenes y 33 familias; a nivel de Orden

destacan por su importancia Diptera, con el

88,6% del total de Insecta, y con valores

muchos menores: Hymenoptera (5,2%),

Coleoptera (3,9%) y Hemiptera (1,8%). A

nivel de familia resaltan, en orden decre-

ciente de importancia: Mycetophilidae, Di-

apriidae, Lygaeidae y Staphylinidae; dentro

de ellas, la primera aparece como la domi-

nante absoluta.

3. Se destaca la presencia de adultos a lo largo

de todo el año de los grupos dominantes de

Insecta: Mycetophilidae, Diapriidae y

Lygaeidae; asimismo muestran una gran

constancia Annelida, Collembola y los Ara-

chnida: Araneae, Acarina y Pseudoscorpi-

onida.

4. La alta contribución de Mycetophilidae y su

persistencia en el tiempo, sugieren algún rol

del grupo en la rapidez de fragmentación de

hojarasca; lo anterior tiene sentido si se

consideran los antecedentes biológicos cono-

cidos, que hablan de la existencia de especies

saprófagas. La importancia de Diapriidae

está dada por su estrecha relación con Myce-

tophilidae, en carácter de endoparásitos;

Staphylinidae en cambio es un grupo de

depredadores y Lygaeidae podría estar rela-

cionado con la presencia de semillas, aun

cuando se reconoce en el grupo la existencia

de elementos depredadores.

5. El hecho de encontrarse adultos de diversas

familias, en cantidades significativas, a lo

largo de todo el ciclo anual y especies presen-

tes exclusivamente en el período climático

más desfavorable, sugiere un establecimiento

y diversificación de elementos propios, bas-

tante antiguo en bosque e Nothofagus

pumilio.

60 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

6. Globalmente, teniendo en cuenta las consid-

eraciones anteriores, los resultados ob-

tenidos están de acuerdo a aquellos publica-

dos previamente, en cuanto a la composición

entomofaunística del estrato superficial del

bosque de lenga, en la XII Región.

AGRADECIMIENTOS

Al Sr. Jovito González, CONAF - Parque Nacio-

nal Torres del Paine, sin cuya colaboración en el

trabajo de terreno habría sido imposible la

ejecución de este estudio.

Al personal de CONAF en dicho Parque, por

la ayuda y facilidades otorgadas para el desarrollo

de este trabajo.

A los técnicos, Sres. Ignacio Mellado H. y

Gerardo Arriagada S. por su cooperación en la

separación de parte de las muestras.

A la Dra. Fresia Rojas A., Prof. Dolly

Lanfranco L., Dr. Ariel Camousseight M., por sus

sugerencias y lectura crítica del manuscrito.

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UNA NUEVA ESPECIE DE STREPSIPTERA DE CHILE Y DOS NUEVOS REGISTROS PARA LA

INSECTOFAUNA DE LA REPUBLICA ARGENTINA (EMBIOPTERA Y THYSANOPTERA)

Luis De Santis! y ALicia E.G. DE SUREDA

RESUMEN

Se describe una nueva especie de Strepsiptera para Chile, Elenchus delicatus n. sp., y se reportan

dos nuevos registros para la insectofauna de Argentina: el Embioptera Diradius pusillus Frieder-

ichs y el Thysanoptera Franklinothrips lineatus Hood.

ABSTRACT

This paper deal with the Embioptera Diradius pusillus Friederichs and the Thysanoptera Fran-

klinothnips lineatus Hood, both new records, from Buenos Aires (Argentina), and the Strepsiptera

Elenchus delicatus new species, from Arica (Tarapacá - Chile).

INTRODUCCION

En este trabajo se da a conocer una nueva especie

de estrepsíptero de Chile y se agregan dos nuevos

registros para la insectofauna de la República

Argentina: la del embióptero Diradius pusillus

Friederichs (1934) y el tisanóptero Frankli-

nothrips lineatus Hood (1949). Para la descripción

del estrepsíptero, se ha adoptado la terminología

dada por Hassan (1939).

El material estudiado queda incorporado a

las colecciones del Museo de La Plata (Argen-

tina). Las medidas absolutas que se entregan en

la descripción de la nueva especie, están expre-

sadas en milímetros.

STREPSIPTERA - ELENCHIDAE

ELENCHUS DELICATUS sp. nov.

Macho: grácil, delicado; alas posteriores poco

esclerotizadas apenas ennegrecidas lo mismo que

los nervios. Cuerpo y patas de color amarillo, con

1Facultad de Ciencias Naturales y Museo, Paseo del

Bosque, 1900 La Plata - República Argentina.

(Recibido: 1 de septiembre de 1992, Aceptado: 19 de

marzo de 1993)

algo de castaño en el dorso del tórax y abdomen;

antenas aclarecidas. Conformación general tal

como la ha representado Bohart (1941, fig. 32)

para E. koebelei, con las diferencias que pueden

apreciarse en la nerviación de las alas posteriores,

entre otras. Nerviación de las alas posteriores

igual a la que da Riek (1970, fig. 31 - 11B) para

el género Elenchus, es decir hay trazas de los

nervios costal a subcostal casi fusionados, radial 1,

2 y 3, este último muy corto, mediano, cubital y

anal.

Longitud de la cabeza, tórax y abdomen en la

proporción 10: 35: 43.

Ancho de la cabeza 0,356; distancia entre los

ojos 0,155, estos con 15 ó 16 facetas en vista dorsal;

mandíbulas anchas, acuminadas en el ápice;

Figuras 1 - 3: Elenchus delicatus sp. nov., macho. 1,

antena; 2, acdeagus; 3, palpo maxilar.

62 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

palpos maxilares largos (fig. 3), tal como los ha

representado Hassan (1939, fig. 25B) para E.

tenuicornis (Kirby); antenas tal como se muestra

en la figura 1, longitud de cada uno de los artejos:

I=0,041; 1I=0,036; parte basal del ¡11=0,065, con

el órgano de Hofeneder ubicado en la línea del

tercio superior, rama libre = 0,274, rama interna

= 0,103; IV = 0,274,

Prescutum triangular, el ápice llega hasta la

línea del tercio posterior; escutelo reducido, de

igual longitud que el postlumbium; postescutelo

redondeado en el borde posterior y de igual

longitud que el prescutum. Longitud de las alas

anteriores = 0,259, longitud del pedicelo = 0,129

y del capitelo = 0,098.

Abdomen subcilíndrico; Órgano copulador

como lo muestra la figura 2.

Longitud del cuerpo = 1,27.

Hembras y larvas: desconocidas.

Bionomia: desconocida; los ejemplares estudia-

dos fueron capturados con trampa Malaise.

Distribución geográfica: Chile. Localidad del

tipo: Arica (Tarapacá).

Observaciones: Esta nueva especie puede ser

comparada con E. butzei Brailovsky (1980) de

México, pero es diferente por la conformación de

las antenas que presentan la rama libre del artejo

TI de igual longitud que el IV, el órgano de

Hofeneder ubicado en la línea del tercio superior,

el artejo apical de los palpos maxilares compara-

tivamente más largo y el aedeagus con la mitad

basal no tan robusta. La conformación de las alas

posteriores recuerda a la especie australiana E.

varleyi Kathirithamby (1989), pero E. delicatus

también es diferente por la coloración,

conformación de las antenas, los palpos maxilares

más largos y un aedeagus muy distinto.

Material estudiado: Macho holotipo y 8 machos

paratipos, Arica (Tarapacá - Chile), diciembre -

1975, Nelson O. Hichins coll.

EMBIOPTERA - OLIGEMBIIDAE

DIRADIUS PUSILLUS FRIEDERICHS

Diradius pusillus Friederichs, 1934: 419.

En el catálogo inédito de los embiópteros argenti-

nos de Bruch (1937), se señalan 6 especies: 5 están

incluidas en Embiidae y la restante en Teratem-

biidae. Ross (1944), en su estudio de los

embiópteros del Nuevo Mundo, ha revisado la

posición sistemática de las mismas; señala que

Embia piquetana Navás, de Santa Fé, permanece

como una especie dudosa y describe como nuevas

Pararhagadochir confusa (de Santa Fé) y P.

schadei (de Santiago del Estero), ambas de la

familia Embiidae. Por nuestra parte hacemos

notar que en la colección del Dr. A.A. Oglobin,

que se conserva en el Museo de La Plata, hay un

macho de una especie que hemos determinado

como Diradius pusillus, lo que constituye otra

adición a la fauna argentina de embiópteros; este

ejemplar procede de Bella Vista (Buenos Aires -

Argentina) 16.1V.1949, A.A. Oglobin coll. La

localidad típica de D. pusillus es Bezirk Humboldt

(Santa Catarina - Brasil). No se ha tenido la

oportunidad de examinar la descripción original

del género y la especie en referencia (Friederichs,

1934), pero las mismas han sido reproducidas por

Davis (1940).

Para una moderna ubicación sistemática de

todas estas formas, resulta imprescindible la

consulta de los aportes de Ross (1970a y b); para

otros antecedentes sobre estos insectos, referidos

a Argentina, resulta de interés el trabajo de

Toledo y Herrera (1978).

THYSANOPTERA - AEOLOTHRIPIDAE

FRANKLINOTHRIPS LINEATUS HOOD

Franklinothirps lineatus Hood, 1949: 4.

Dice Stannard (1952) que esta especie es fácil de

reconocer, porque es la única que presenta los

bordes de las alas ennegrecidos, con mayor inten-

sidad en las anteriores. Los ejemplares que es-

tudió Hood (op. cit.), fueron hallados en Nueva

Teutonia (Santa Catarina - Brasil), sobre hojas de

Vitex sp. Jacot-Guillarmod (1970), entrega la

misma información en su catálogo. El único ejem-

plar estudiado por nosotros procede de Santa

Catalina (Buenos Aires - Argentina), 13.1V.1988,

E. Virla coll. colectado sobre malezas.

AGRADECIMIENTOS

Expresamos nuestro reconocimiento, por la vali-

osa ayuda prestada, a los doctores Z. Boucek, P.

Hammond y J.S. LaSalle, del Museo de Historia

De Santis y Sureda: Nuevo Strepsiptera para Chile y nuevos registros 63

Natural de Londres, y a la Dra. J. Kathirithamby

de la Universidad de Oxford.

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NUEVOS ANTECEDENTES DE COLEOPTEROS XILOFAGOS Y PLANTAS HOSPEDERAS EN

CHILE, CON UNA RECOPILACION DE CITAS PREVIAS*

Juan ENRIQUE BarRIGA T.!, Tomistav Curkovic S.?, Thomas FicHer L.!,

José Luis HenríQUEz S.? y JorGE MacaYa B.?

RESUMEN

Entre 1981-1992 los autores efectuaron una prospección de coleópteros xilófagos entre Chañaral

(HI Región) y Curacautín (IX Región), obteniendo y determinando 80 especies de Cerambycidae,

55 de Buprestidae, 24 de Curculionidae, 1 de Belidae, 7 de Bostrichidae, 6 de Anobiidae, 2 de

Oedemeridae y 3 de Scarabaeidae, estableciendo uno o varios de sus hospederos y el estado de

la madera (viva o muerta) de la cual se obtuvieron. Además se incluyen las referencias

bibliográficas sobre el tema.

ABSTRACT

A survey of wood-boring Coleoptera was conducted between Chañaral (3rd Region) and

Curacautín (9th Region) during 1981-1992. The species determined belong to the following

families: Cerambycidae (80), Bruprestidae (55), Curculionidae (24), Belidae (1), Bostrichidae (7),

Anobiidae (6), Oedemeridae (2) and Scarabaeidae (3). The wood substrate in wich the above

specieswere found, ¡.e. dead or live wood, is also reported. A list of selected referencesis provided.

INTRODUCCION

El conocimiento de los hospederos de coleópteros

xilófagos en Chile es escaso, constituyendo su

estudio una necesidad desde la perspectiva

científica y sus resultados una valiosa información

para los sectores productivos relacionados.

Con el objeto de ampliar el conocimiento de

los hospederos de coleópteros xilófagos en Chile,

durante los últimos 12 años los autores han reali-

zado prospecciones y estudiado numerosas espe-

cies asociadas a vegetales leñosos. En algunos

casos esta información constituye la primera

referencia sobre el hábitat tanto de insectos del

bosque o matorral nativo chileno, como de espe-

*Publicación financiada parcialmente por el DTI,

Universidad de Chile.

IDepto. Producción Agrícola, Facultad de Ciencias

Agrarias y Forestales, Universidad de Chile, Casilla 1004,

Santiago - Chile.

2Depto. Sanidad Vegetal, Facultad de Ciencias Agrarias

y Forestales, Universidad de Chile, Casilla 1004, Santiago -

Chile.

3E] Dante 4313, Las Condes, Santiago -Chile.

(Recibido: 1 de septiembre de 1992. Aceptado: 18 de

marzo de 1993).

cies de plantas exóticas, ampliándose en otros

casos la información referente a plantas atacadas.

Adicionalmente se efectuó una recopilación de

los antecedentes previamente publicados.

MATERIALES Y METODOS

Durante el período comprendido entre 1981-

1992, los autores efectuaron prospecciones de

coleópteros xilófagos en la zona comprendida

entre Chañaral (III Región) y Curacautín (1X

Región), colectando en terreno, durante todo el

año muestras de plantas dañadas (ramas, troncos

y raíces), conservándolas posteriormente en

cámaras de crianza en laboratorio, a temperatura

ambiente y con un grado conveniente de hume-

dad. El material recolectado incluyó diferentes

estados de desarrollo de estas especies (larvas,

pupas e imagos en el interior de cámaras pupales).

Los ejemplares obtenidos (criados) fueron

identificados por comparación con material de-

terminado existente en colecciones nacionales

(Museo Nacional de Historia Natural, Museo

Entomológico de la Escuela de Agronomía de la

66 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Universidad de Chile y colecciones particulares

de los autores), en las cuales se encuentran depo-

sitados. La identificación de las plantas hospe-

deras se realizó directamente en terreno o en

laboratorio. Las muestras vegetales se encuentran

deposi-tadas en el herbario de uno de los autores.

RESULTADOS

Las especies de coleópteros obtenidas se presen-

tan en la Parte Ll, agrupadas por familias, indi-

cando sus respectivas plantas hospederas (en

orden alfabético) y la condición de la madera

afectada según las siguientes categorías; a) viva

(V), denominación que considera tanto a tallos,

en el sentido amplio, como raíces leñosas funcio-

nales al momento de la recolección; y b) muerta

(M), incluyendo tanto a tallos, en el sentido

amplio, como raíces leñosas aparentemente no

funcionales al momento de la recolección, con

presencia de yemas necrosadas, hojas secas y bajo

contenido de humedad. Este concepto de madera

no sólo incluye al xilema y floema, según

definición estricta de Fon Quer (1990), sino

también a corteza y médula. Se indica(n) además

la(s) región(es) en que se recolectó el material.

Con respecto a la familia Scolytidae (de

autores), el tratamiento sistemático aquí em-

pleado es el de Elgueta y Arriagada (1989), que

la incluye en la familia Curculionidae; en el mismo

caso se encuentra la familia Lyctidae (de autores)

que se incluye en la familia Bostrichidae.

En la Parte II se presentan las especies de

plantas hospederas ordenadas alfabéticamente

por familias; a continuación del nombre científico

de la planta se indican las especies huéspedes y la

condición de la madera atacada.

En las partes III y IV se resumen los registros

previamente publicados; al igual que en las partes

previas, las familias se ordenan alfabéticamente,

lo mismo que huéspedes y hospederos. La

información recopilada se detalla de la siguiente

manera:

Parte II: huésped (ordenados por familia),

seguidos por hospedero(s), indicando el estado de

la madera afectada [(-), corresponde a aquellos

casos en que no se indica el estado de la madera]

y la referencia bibliográfica. A los hospederos se

los ha citado por su nombre científico, salvo en

aquellos casos en que el nombre vulgar usado en

la bibliografía corresponda a más de una planta.

Parte IV: plantas hospederas, especies

huéspedes y condición de la madera afectada.

Sólo se han incluido aquellas especies vegetales

citadas como hospederas, omitiéndose aquellas a

las que sólo se les ha asociado una especie de

insecto.

En la Tabla 1 se entrega una comparación

entre el número de especies de coleópteros

xilófagos existentes en el país (Elgueta y Arria-

gada, 1989) y el número de especies con hospe-

deros conocidos, de cada familia tratada en el

presente aporte.

TABLA 1

ESPECIES DE COLEOPTEROS

XILOFAGOS CON HOSPEDEROS

CONOCIDOS EN CHILE, RESPECTO DEL

TOTAL DE CADA FAMILIA

Total Especies con

familia* hospederos

conocidos

N2 %

Anobiidae dd, 8 10,4

Belidae 5 1 20,0

Bostrichidae 14 8 Sl

Buprestidae 67 46 68,7

Cerambycidae 176 OS 54,0

Curculionidae 432 41 9,5

Oedemeridae 17 7 11,8

Scarabaeidae 181 3 7

* Elgueta y Arriagada, 1989.

En la Tabla 2 se indica el origen, nativo o exótico,

de las especies de coleópteros xilófagos tratadas.

I. Coleópteros xilófagos, sus plantas hospederas,

condición de la madera afectada [(V), viva; (M),

muerta] y Región* donde se recolectó el material.

* división política actual, (RM) = Región Metro-

politana.

ANOBIIDAE

Calymmaderus sp.:

Schinus polygamus (M) (59).

Calymmaderus sp.:

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile

TABLA 2

ORIGEN DE LAS ESPECIES DE

COLEOPTEROS TRATADAS

Especies

prospectadas

Especies

citadas

nativas exóticas nativas exóticas

Anobiidae 6 -- 1 1

Belidae 1 -- -- --

Bostrichidae 7 -- 3 1

Buprestidae 42* 2 ds 1

Cerambycidae 78 2 47 2

Curculionidae 23 sl 13 10

Oedemeridae 2 -- -- --

Scarabaeidae 3 -- 1 --

Total 171 6 72 15

* No incluye subespecies, variedades y formas.

Acacia caven (M) (RM).

Calymmaderus Sp.:

Maytenus boaria (M) (52).

Cerocosmus Sp.:

Cristaria sp (M) (42).

Hadrobregmus sp..:

Chusquea culeou (M) (82).

Xyletinus sp.:

Encelia canescens var. oblongifolia (M) (4%).

BELIDAE

Dicordylus marmoratus (Phil.):

Chusquea culeou (M) (72).

BOSTRICHIDAE

Chilenius spinicollis (F. e G.):

Senna cummingi var. coquimbensis (M) (42).

Dexicrates robustus (Bl.):

Acacia caven (M) (RM);

Chusquea culeou (M);

Cryptocarya alba (M) (RM);

Lithrea caustica (M) (RM);

Malus communis (M) (RM);

Prunus persica (M) (RM);

Pyrus communis (M) (RM);

Robinia pseudoacacia (M) (72);

Schinus polygamus (M) (42);

Vitis vinifera (M) (RM).

Lyctus sp.:

Chusquea culeou (M) (RM);

Gevuina avellana (M) (RM).

Micrapate scabrata (Er.):

Actinidia deliciosa (M) (RM);

Baccharis linearis (M) (4%);

Chusquea culeou (M) (RM, 42 a 72).

Ficus carica (M) (RM);

Passiflora coerulea (M) (RM);

Prosopis chilensis (M) (RM);

Rubus ulmifolius (M) (RM);

Vitis vinifera (M) (RM, 52 a 72);

Wisteria sinensis (M) (RM).

Neoterius mystax Bl.:

Chusquea culeou (M) (RM).

Polycaon chilensis (Er.):

Eriobotrya japonica (M) (RM);

Eucalyptus globulus (M) (5%, RM);

Lithrea caustica (M) (RM);

Persea americana (M) (RM).

Prostephanus sulcicollis (F. € G.):

Cryptocarya alba (M) (5% RM, 72);

Quillaja saponaria (M) (RM).

BUPRESTIDAE

Anthaxa chloris Germain:

Azara celastrina (M) (59).

Anthaxia concinna Mannh.:

Acacia caven (M) (4%, 5% RM);

Cryptocarya alba (M) (5% RM);

Cydonia oblonga (M) (RM, 72);

Lithrea caustica (M) (48 52 RM);

Malus communis (M) (RM);

Maytenus boaria (M) (5% RM);

Parkinsonia aculeata (M) (RM);

Pinus sp. (M) (RM);

Pinus radiata (M) (RM);

Prosopis chilensis (M) (32, 4%);

Prunus avium (M) (82);

Pyrus communis (M) (RM);

Quillaja saponaria (M) (5% RM);

Robinia pseudoacacia (M) (72);

Schinus latifolius (M) (52 RM);

Schinus molle var. areira (M) (49);

Schinus polygamus (M) (52 RM);

Senna multiglandulosa (M) (RM).

Anthaxia cupriceps F. € G.:

Austrocedrus chilensis (M) (7%, 82);

68 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Sequoia sempervirens (M) (82).

Anthaaa maulica (Mol.):

Baccharis linearis (M) (52 RM);

Colliguaya odorifera (M) (RM);

Crataegus oxyacantha (M) (RM);

Cryptocarya alba (M) (58 RM);

Lithrea caustica (M) (5% RM);

Maytenus boaria (M) (58 RM);

Nothofagus dombeyi (M) (72%);

Nothofagus obliqua (M) (72);

Persea americana (M) (RM);

Quillaja saponaria (M) (5% RM);

Robinia pseudoacacia (M) (RM);

Schinus latifolius (M) (5£ RM);

Schinus polygamus (M) (RM, S£ a 79);

Senna multiglandulosa (M) (RM).

Anthaxda obscurata Reed:

Schinus latifolius (M) (52);

Schinus polygamus (M) (4%, 59).

Anthaxaa verecunda Er.:

Nothofagus dombeyi (M) (72 a 99);

Nothofagus obliqua (M) (52 7% a 92).

Anthaxioides aurora (Phil. £ Phil.):

Nothofagus dombeyi (V) (72);

Atacamita chiliensis (L. £ G.):

Ephedra chilensis (M) (42);

Frankenia chilensis (M) (39);

Porlieria chilensis (M) (42).

Buprestis novemmaculata L.:

Pinus radiata (M) (5% a 8%).

Chrysobothris bothrideres (F. € G.):

Colletia hystrix (V) (5% RM);

Colletia ulicina (V) (RM);

Retanilla ephedra (V) (5% RM);

Trevoa trinervis (V) (5% RM).

Chrysobothris bothrideres pehuenche Moore:

Colletia hystrix (V) (7%, 8%);

Colletia ulicina (V) (72, 82);

Discaria chacaye (V) (8%).

Conognatha azarae fisheri (Hosch.):

Azara celastrina (V) (52).

Conognatha chalybaeofasciata Germ. £ Kerr.:

Nothofagus dombeyi (M) (72).

Conognatha chalybaeiventris F. £ G.:

Nothofagus antarctica (V) (72);

Nothofagus dombeyi (M) (7%);

Nothofagus obliqua (M) (79);

Nothofagus pumilio (V) (8%).

Conognatha costipennis Germain:

Colletia hystrix (V) (5% RM, 82).

Conognatha germaini Théry:

Escallonia virgata (V) (82).

Conognatha leechi Cobos:

Escallonia angustifolia var. coquimbensis (V)

(42).

Conognatha souverbú Germain:

Diostea juncea (V) (78, 82).

Conognatha vinidiventris viridiventris (Sol.):

Pemnettya sp. (V) (92).

Conognatha vindiventris sagittaria (Fairm.):

Pernettya mucronata (V) (82).

Dactylozodes bifasciatus Moore:

Adesmia viscosa (V) (52).

Dactylozodes conjuncta Chevr.:

Baccharis concava (V) (5% RM);

Bacchanris linearis (V) (4%, 5% RM);

Baccharis rhomboidalis (V) (58 RM);

Ephedra chilensis (V) (42);

Gochnatia foliosa (V) (RM).

Dactylozodes conjuncta semivittata Fairm.:

Baccharis rhomboidalis (V) (82).

Dactylozodes conjuncta stenoloma (Phil. £ Phil.):

Baccharis concava (V) (RM);

Baccharis linearis (V) (RM);

Eupatorium salviae (V) (52).

Dactylozodes javierae Moore:

Heliotropium sp. (V?) (32).

Dactylozodes picta Lap. € Gory.:

Adesmia pinifolia (V) (RM).

Dactylozodes rouleti confusa (F. € G.):

Baccharis concava (V) (RM);

Baccharis linearis (V) (5% RM);

Baccharis rhomboidalis (V) (RM);

Chuquiraga oppositifolia (V) (RM);

Eupatorium glechonophyllum (V) (RM).

Dactylozodes rouleti Solier:

Chrysanthemum coronarium (V) (49);

Heliotropium stenophyllum (V) (42).

Dactylozodes rousseli rousseli Solier:

Baccharis concava (V) (72).

Ectinogonia buqueti intermedia Kerr.:

Encelia canescens var. oblongifolia (V) (4%).

Ectinogonia buqueti gutierreza Cobos:

Adesmia pungens (V) (42);

Cristaria pinnata (V y M) (49);

Cristaria sp. (V y M) (39).

Ectinogonia chalybaeiventris Germ. € Kerr.:

Adesmia microphylla (V) (4%);

Pyrrhocactus sp. (V) (39).

Ectinogonia darwini Waterhouse:

Copiapoa cinerea var. columna-alba (V) (32).

Ectinogonia sp.:

Frankenia chilensis (V) (32).

Ectinogonia sp.:

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 69

Atriplex sp. (M) (4%).

Ectinogonia sp.:

Cristaria cyanea (M y V) (22, 32);

Cristaria patens (M y V) (2% 32).

Epistomentis pictus Lap. $ Gory.:

Nothofagus dombeyi (M) (72 a 92);

Nothofagus pumilio (M) (82).

Hypoprasis elegans elegans (Phil. y Phil.):

Nothofagus dombeyi (V) (82 y 92);

Nothofagus pumilio (V) (82 y 92).

Hypoprasis elegans harpagon (Fairm.):

Nothofagus dombeyi (V) (72 y 892);

Nothofagus pumilio (V) (72 y 82).

Mastogenius parallelus Solier:

Senna cummingii var. coquimbensis (M) (49).

Mastogenius sulcicollis Phil. £ Phil.

Acacia caven (M) (RM);

Adesmia confusa (M) (5% RM);

Adesmia microphylla (M) (5% RM);

Maytenus boaria (M) (52);

Nothofagus obliqua (M) (72).

Mastogenius Sp.:

Adesmia microphylla (M) (4%).

Mendizabalia germaini germaini (Germ. € Kerr.):

Nothofagus antarctica (M) (92).

Neocypetes guttulata (F. £ G.):

Acacia caven (M) (3%, 5% RM, 72);

Geoffroea decorticans (M) (32);

Haplopappus sp. (M) (39);

Prosopis chilensis (M) (38 RM);

Robinia pseudoacacia (M) (RM, 72).

Philandia valdiviana (Phil. £ Phil.):

Nothofagus dombeyi (V?) (92).

Polycesta costata Solier:

Cryptocarya alba (M) (RM);

Lithrea caustica (M) (52).

Pterobothris corrosus F. £ G.:

Nothofagus antarctica (V) (82).

Pygicera scripta (Lap. € Gory);

Maytenus boariía (V) (52 RM).

Trachypteris picta decastigrna (F.):

Populus nigra var. italica (M) (RM);

Populus simon (M) (RM);

Salix babylonica (M) (RM).

Tnigonogentum angulosum ruginosum Fairm.:

Baccharis linearis (V) (82);

Fabiana imbricata (V) (82).

Trigonogenium angulosum Sol. forma aurulenta

Cobos:

Baccharis linearis (V) (RM).

Trigonogenium biforme Cobos:

Baccharis concava (V) (RM);

Baccharis rhomboidalis (V) (RM).

Trigonogenium biforme forma modestus Cobos:

Baccharis concava (V) (RM);

Baccharis linearis (V) (RM);

Baccharis rhomboidalis (V) (RM).

Tngonogenium sp.:

Porlieria chilensis (V) (RM).

Tngonogentum Sp.:

Baccharis linearis (V) (42).

Tyndaris marginella Fairm.:

Colletia hystrix (M) (52 RM);

Trevoa trinervis (M) (58 RM).

Tyndaris planata Lap. € Gory.:

Acacia caven (M) (RM, 32 a 72);

Colletia hystrix (M) (RM, 42 a 72);

Diospyros kaki (M) (RM);

Prosopis chilensis (M) (32 RM);

Robinia pseudoacacia (M) (RM, 5% 72);

Schinus polygamus (M) (42);

Trevoa trinervis (M) (RM, 52 a 72).

CERAMBYCIDAE

Acanthinodera cummingi Hope:

Beilschmiedia miersii (M*) (52);

Cryptocarya alba (M*) (58 RM);

Lobelia excelsa (M*) (59);

Maytenus boaria (M*) (59);

EMUSSp (MINS 72):

Populus nigra var. italica (M) (72);

Quercus robur (M*) (62).

* = presencia de larva de último estadio

Achenoderus octomaculatus (F. £ G.):

Nothofagus dombeyi (M) (72 a 98).

Achryson lineolatum Er.:

Acacia caven (M) (32);

Geoffroea decorticans (M) (39.

Aconopterus cristatipennis Bl.:

Hidrangea serratifolia (M) (72).

Adalbus crassicomis F. 4 G.:

Nothofagus antarctica (V) (9%).

Ancylodonta nitidipennis Germain:

Azara celastrina (V) (42).

Ancylodonta tristis Bl.:

Aristotelia chilensis (M y V) (72);

Lithrea caustica (V) (48, 52);

Schinus latifolius (V) (52 RM);

Schinus patagonicus (V) (82);

Schinus polygamus (V) (4%, 59);

Schinus velutinus (V) (72).

Azygocera picturata F. $ G.:

Nothofagus dombeyi (M) (82);

Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Nothofagus pumilio (M) (882).

Callideriphus collaris Phil. £ Phil.:

Adesmia confusa (M) (5% RM);

Adesmia microphylla (M) (5% RM).

Calliderniphus laetus Bl.:

Aristotelia chilensis (M) (RM, 72);

Cotoneaster franchetti (M) (RM);

Crataegus oxyacantha (M) (RM);

Cryptocarya alba (M) (52 RM);

Cydonia oblonga (M) (RM, 72);

Ficus carica (M) (RM);

Lithrea caustica (M) (4% 5% RM);

Malus communis (M) (RM, 6%, 72);

Maytenus boaria (M) (5% RM);

Nothofagus dombeyi (M) (72, 8%);

Nothofagus obliqua (M) (RM, 7%, 82);

Prunus avium (M) (82);

Prunus domestica (M) (RM);

Pyracantha coccinea (M) (RM);

Pyrus communis (M) (RM);

Quillaja saponaria (M) (5% RM);

Salix babylonica (M) (RM);

Salix viminalis (M) (62);

Schinus latifolius (M) (52);

Schinus polygamus (M) (42% RM);

Vitis vinifera (M) (RM).

Callidenphus maculatus Cerda:

Quillaja saponaria (M) (RM).

Callideriphus niger Phil. £ Phil.:

Quillaja saponaria (M) (RM).

Callidenphus transversalis Phil. £ Phil.:

Cryptocarya alba (M) (5% RM);

Schinus latifolius (M) (52).

Callisphyris apicicomis F. € G.:

Accra sellowiana (V) (69);

Betula pendula (V) (RM, 72);

Betula sp. (V) (RM);

Casuarina cunninghamiana (V) (RM);

Cotoneaster franchetti (V) (RM);

Crataegus oxyacantha (V) (RM, 72);

Cydonia oblonga (V) (RM, 7%);

Luma apiculata (V) ($2);

Malus communis (V) (RM, 7%, 82);

Pyracantha coccinea (V) (RM, 72);

Ribes polyanthes (V) (RM);

Rosa moschata (V), (7%, 82);

Rosa sp. (V) (RM);

Rubus ulmifolius (V) (RM, 52 a 89);

Ulmus sp. (V) (RM).

Callisphyris asphaltinus F. € G.:

Nothofagus dombeyi (V) (72).

Callisphyris macropus Newm.:

Berberis sp. (V) (9%);

Betula pendula (V) (92);

Betula sp. (V) (92);

Cydonia oblonga (V) (9%);

Malus communis (V) (92);

Ribes trilobum (V) (92);

Rosa moschata (V) (92);

Rubus idaeus (V) (92).

Callisphyriss molorchoides Guérin:

Colletia hystrix (V) (58 RM, 8%, 92);

Colletia ulicina (V) (72);

Discaria chacaye (V) (82);

Discaria trinervis (V) (RM);

Retanilla ephedra (V) (RM);

Retanilla stricta (V) (RM);

Trevoa trinervis (V) (52 a 78 RM);

Trevoa spinifer (V) (52).

Callisphyris odyneroides F. $ G.:

Berberis empetrifolia (V) (RM).

Callisphyris semicaligatus F. £ G.:

Nothofagus antarctica (V) (72 a 92);

Nothofagus dombeyi (V) (72 a 92);

Nothofagus pumilio (V) (82).

Callisphyris uretai Cerda:

Berberis empetrifolia (V) (82).

Calydon globithorax F. £ G..:

Nothofagus antarctica (M) (82).

Calydon havrylenkoi Bosq:

Nothofagus dombeyi (M) (7%, 82);

Nothofagus pumilio (M) (82).

Calydon submetallicum (Bl.):

Nothofagus dombeyi (M) (72 a 92);

Nothofagus obliqua (M) (72 a 92);

Nothofagus pumilio (M) (82);

Quillaja saponaria (M) (RM).

Chenoderus bicolor F. 4 G.:

Myrceugenia obtusa (M) (72);

Nothofagus dombeyi (M) (7%, 89);

Nothofagus obliqua (M) (7%, 82).

Chenoderus testaceus (Bl.):

Maytenus magellanica (V y M) (92).

Chenoderus tricolor F. £ G.:

Nothofagus dombeyi (M) (72 a 92);

Nothofagus obliqua (M) (92).

Chenoderus venustus F. € G.:

Nothofagus dombeyi (M) (7%, 82);

Nothofagus pumilio (M) (82).

Cleptonotus subarmatus (F. € G.):

Eupatorium salviae (M) (49).

Colobura alboplagiata Bl.:

Pinus radiata (M) (82).

Emphytoecia alboliturata (Bl.):

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 71

Rubus ulmifolius (M) (72).

Epipodocarpus andinus Bosq:

Araucaria araucana (M) (8% 92).

Estola hirsutella Auriv.:

Araucaria araucana (M) (8%, 92).

Exocentrus pusillus Bl.:

Nothofagus dombeyi (M) (72);

Nothofagus obliqua (M) (72);

Nothofagus pumilio (M) (82).

Grammicosum flavofasciatum Bl.:

Acacia dealbata (M) (72);

Eucalyptus globulus (M) (62);

Nothofagus dombeyi (M) (7%, 82);

Nothofagus obliqua (M) (82);

Quercus robur (M) (62);

Populus nigra var. italica (M) (729);

Robinia pseudoacacia (M) (72).

Grammicosum larsoni Cerda:

Acacia caven (M) (42);

Heliotropium stenophyllum (M) (42);

Porlieria chilensis (M) (4%);

Senna cummingil var. coquimbensis (M) (42);

Senna multiglandulosa (M) (42).

Grammicosum maculicone Germain:

Acacia caven (M) (5% RM);

Porlieria chilensis (M) (RM).

Grammicosum minutum Bl.:

Quillaja saponaria (M) (RM).

Grammicosum signaticolle Bl.:

Acacia caven (M) (RM, 5% 72);

Colletia hystrix (M) (RM);

Cydonia oblonga (M) (RM);

Ficus carica (M) (RM);

Robinia pseudoacacia (M) (RM, 72).

Hephaestion bullocki Cerda:

Nothofagus dombeyi (V) (82).

Hephaestion holomelas F. Phil.:

Baccharis concava (V) (52);

Baccharis linearis (V) (4%, 52);

Eupatorium salviae (V) (42, 52).

Hephaestion lariosi (Bosq):

Maytenus boaria (V) (RM, 52).

Hephaestion ocreaturm Newm.:

Pernettya mucronata (V) (8% 92).

Hephaestion pallidicornis F. 4 G.:

Diostea juncea (V) (RM).

Hephaestion violaceipennis F. £ G.:

Maytenus boaria (V) (5% RM, 72).

Hesperophanes inspergatus F. 4: G.:

Nothofagus dombeyi (M) (72).

Hesperophanes philippi (Bl.):

Cryptocarya alba (M) (52);

Maytenus boaria (M) (6%);

Nothofagus dombeyi (M) (72);

Nothofagus obliqua (M) (72).

Hesperophanes sulcicornis Germ.:

Nothofagus dombeyi (M) (72);

Nothofagus obliqua (M) (72).

Holopterus annulicornis Phil.

Myrceugenia sp. (V) (78, 89);

Myrceugenia exsucca (V) (52);

Myrceugenia aff. montana (V) (82);

Myrceugenia obtusa (V) (52);

Myrceugenia aff ovata var. nannophylla (V)

(99);

Myrceugenia planipes (V) (92);

Myrceugenia rufa (V) (52);

Myrteola leucomyrtillus (V) (8% 92).

Holopterus chilensis Bl..

Nothofagus obliqua (V) (72).

Huequenia araucana (Cerda);

Araucaria angustifolia (M) (RM);

Araucaria araucana (M) (89);

Arauraria bidwilli (M) (RM).

Huequenia livida (Germain):

Araucaria araucana (M) (92).

Microplophorus magellanicus Bl.:

Nothofagus antarctica (M) (8%, 92);

Nothofagus dombeyi (M) (8%, 92);

Nothofagus pumilio (M) (82).

Microplophorus pegnai Galileo:

Araucaria araucana (M) (92);

Prumnopitys andina (M) (92).

Nathrius brevipennis (Muls.):

Araucaria angustifolia (M) (RM);

Cydonia oblonga (M) (RM);

Ficus carica (M) (4% RM);

Junglans regia (M) (RM);

Persea americana (M); (RM);

Prunus domestica (M) (RM);

Wisteria sinensis (M) (RM).

Necydalopsis barriai Cerda:

Nothofagus dombeyi (M) (79);

Nothofagus obliqua (M) (72).

Necydalopsis iridipennis F. € G.:

Adenopeltis serrata (M) (42);

Cissus striata (M) (59).

Neohebestola humeralis (Bl.):

Anstotelia chilensis (M) (72);

Baccharis linearis (M) (52);

Misodendnum quadriflorum (M) (72);

Rubus ulmifolius (M) (RM, 72);

Sophora macrocarpa (M) (72).

Neohebestola luchopegnai Martins £ Galileo:

72 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Encelia canescens var. oblongifolia (M) (3%,

42).

Neohebestola petrosa (Bl.):

Acrisione denticulata (V) (528 RM);

Lobelia excelsa (V) (4%, 52 RM).

Neohebestola vitticollis (Bl.):

Baccharis linearis (M) (4%);

Cristaria pinnata (M) (48);

Encelia canescens var. oblongifolia (M) (3%,

42);

Tetragonia ovata (M) (32).

Neotaphos rachelis Fischer:

Ephedra breana (V) (32);

Ephedra chilensis (V) (4%, 5% RM).

Oectropsis latifrons Bl..

Lithrea caustica (M) (4%, 59);

Schinus latifolius (M) (4, 52);

Schinus patagonicus (M) (72);

Schinus polygamus (M) (RM, 4% a 79);

Schinus velutinus (M) (72).

Oxypeltus quadrispinosus Bl.:

Nothofagus antarctica (V) (8%);

Nothofagus dombeyi (V) (82);

Nothofagus pumilio (V) (82).

Paraholopterus nahuelbutensis Cerda y Cekalovic:

Araucaria araucana (V) (82).

Parandra araucana Bosq:

Araucaria araucana (M) (8% 92);

Prumnopitys andina (M) (92).

Phoracantha seripunctata (Fab.):

Eucalyptus globulus (M) (32 a 7% RM).

Phymatioderus bizonatus Bl.:

Acacia caven (M) (RM);

Colletia hystrix (M) (RM);

Cryptocarya alba (M) (52 RM);

Nothofagus pumilio (M) (82);

Persea americana (M) (RM);

Quillaja saponaria (M) (52, RM);

Schinus latifolius (M) (52);

Schinus molle var. areira (M) (RM);

Schinus polygamus (M) (5% RM).

Planopus laniniensis Bosq:

Nothofagus pumilio (V) (82).

Planopus sp.:

Nothofagus dombeyi (V) (82).

Platynocera andina Cerda:

Retanilla ephedra (V) (5% 72).

Platynocera lepturoides Bl.:

Nothofagus dombeyi (V) (8% 92).

Platynocera virescens F. € G.:

Chusquea culeou (V) (72 a 92);

Chusquea cummingú (V) (52);

Chusquea quila (V) (8% 92).

Pseudocephalus monstrosus Bl.):

Nothofagus obliqua (M) (72).

Strongylaspis limae (Guérin):

Crataegus oxyacantha (V) (RM);

Cryptocarya alba (M) (58 RM);

Enobotrya japonica (M) (RM);

Eucalyptus globulus (M) (5% RM);

Eucalyptus sp. (M) (5% RM);

Maytenus boaria (M) (RM);

Persea americana (M) (RM);

Quercus robur (M) (RM);

Quillaja saponaria (M) (RM);

Ulmus carpinifolia (M) (RM).

Syllitus schajovskou Bosq:

Araucaria araucana (M) (99);

Prumnopitys andina (M) (99).

Tyllomorpha lineoligera Bl;

Acacia caven (M) (RM);

Adesmia confusa (M) (58 RM);

Adesmia microphylla (M) (58 RM);

Avellanita bustillosi (M) (RM);

Maytenus boaria (M) (52);

Schinus latifolius (M) (59);

Trevoa trinervis (M) (RM).

Xenocompsa flavonitida (F. € G.):

Anstotelia chilensis (M) (72);

Betula pendula (M y V) (RM);

Colletia hystrix (M) (92);

Cydonia oblonga (M) (RM);

Ficus carica (M) (RM);

Laurus nobilis (M) (RM);

Nothofagus obliqua (M) (52);

Parkinsonia aculeata (M) (RM);

Schinus polygamus (M) (RM);

Senna cummingil var. coquimbensis (M) (42);

Trevoa trinervis (M) (S2);

Wisteria sinensis (M) (RM).

Xenocompsa martinsi Cerda:

Adesmia argentea (M) (38, 42);

Adesmia microphylla (M) (42).

Xenocompsa semipolita (F. € G.):

Maytenus boaria (M) (79);

Myrceugenia sp. (M) (42);

Nothofagus obliqua (M) (RM);

Schinus latifolius (M) (S2);

Schinus sp. (M) (52).

Vilchesia valenciai Cerda:

Nothofagus dombeyi (M) (7%, 89);

Nothofagus pumilio (M) (82).

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 73

CURCULIONIDAE

Apocnemidophorus obsoletus (Bl.):

Lithrea caustica (M) (4%, 5% RM);

Schinus latifolius (M) (4%, 52).

Apocnemidophorus pruinosus (Bl.):

Lithrea caustica (M) (4% 5% RM);

Schinus latifolius (M) (4%, 52).

Apocnemidophorus variegatus (Bl.):

Lithrea caustica (M) (42);

Schinus latifolius (M) (52).

Araucarius major Kuschel:

Araucaria araucana (M) (8% 92).

Araucarius minor Kuschel:

Araucaria araucana (M) (82).

Araucanius sp.:

Araucaria araucana (M) (8% 92).

Blastophagus destructor Eggers:

Araucaria araucana (M) (8% 92).

Calvertius tuberosus F. £ G.:

Araucaria araucana (M) (8% 92).

Cnemecoelus sp.:

Cristaria pinnata (M) (3%, 42).

Hylurgonothus brunneus Schedl:

Araucaria araucana (M) (92).

Neomagdalis unicolor Bl.:

Cissus striata (M) (42).

Pentarthrum castaneum (Bl.):

Puya chilensis (M) (RM).

Pentarthrum huttoni Wol!l.:

Acacia caven (M) (RM);

Cestrum parqui (M) (49);

Lobelia excelsa (M) (42).

Pentarthrum opazoti Breth.:

Puya chilensis (M) (RM).

Pentarthrum sp.:

Puya chilensis (M) (RM).

Pentarthrum sp.:

Acacia saligna (M) (RM).

Pityopthorus corticalis Eich.:

Lobelia excelsa (M) (42).

Psepholax dentipes (Boh.):

Aextoxicon punctatum (M) (52).

Rhyephenes humeralis (Guérin):

Berberis rotundifolia (M) (89);

Nothofagus dombeyi (M) (7%, 82).

Rhyephenes squamiger F. Phil.:

Baccharis rhomboidalis (V. raiz) (59);

Persea americana (M) (RM);

Senna cummingt var. coquimbensis (V) (4%);

Senna multiglandulosa (M) (RM).

Rhyephenes sp.:

Salix babylonica (M) (72).

Scolytus rugulosus (Miiller):

Malus communis (M) (RM);

Prunus domestica (M) (RM);

Prunus dulcis (M) (RM);

Prunus persica (M) (RM, 72).

Xyleborinus saxeseni (Ratzeburg):

Actinidia deliciosa (V) (RM);

Malus communis (M) (RM, 62);

Prunus persica (M) (RM).

Xylechinus sp.:

Muehlenbeckia hastulata (M) (42).

Xylechinus sp.

Adesmia argentea (M) (49);

Adesmia microphylla (M) (42).

Xylechinus sp.:

Senna cummingii var. coquimbensis (M) (42).

Xylechinus sp.

Otholobium glandulosum (M) (72).

OEDEMERIDAE

Nacerdes sp.:

Cristaria pinnata (M) (4%).

Platylytra viticolle Fairm.:

Araucaria araucana (M) (92).

SCARABAEIDAE

Oryctomorphus bimaculatus Guer.:

Entobotrya japonica (M) (RM);

Nothofagus dombeyi (M) (72 a 99);

Nothofagus obliqua (M) (7%, 8%);

Nothofagus pumilio (M) (8%);

Persea americana (M) (RM).

Oryctomorphus laevipennis Burm.:

Nothofagus obliqua (M) (72).

Oryctomorphus maculicollis Germ.:

Puya chilensis (M) (4%);

Salix babylonica (M) (RM).

II. Plantas hospederas y sus especies huéspedes

(separadas por familia *) indicando la condición

de la madera atacada [(V): viva; (M): muerta].

* (Anob.): Anobiidac; (Bel): Belidae; (Bos.):

Bostrychidae; (Bup.): Buprestidae; (Cer.):

Cerambycidae; (Cur.): Curculionidae; (Oed.):

Oedemeridae; (Sca.): Scarabaeidae.

Il Rev. Chilena Ent. 20, 1993

ACTINIDIACEAE

Actinidia deliciosa (A. Ch.) Liang et Ferg.: (Bos.)

= Micrapate scabrata (M); (Cur.) = Xyleborinus

saxeseni (V).

AEXTOXICACEAE

Aextoxicon punctatum R. et P.: (Cur.) = Psepho-

lax dentipes (M).

AIZOACEAE

Tetragonia ovata Phil.: (Cer.) = Neohebestola

vitticollis (M).

ANACARDIACEAE

Lithrea caustica (Mol.) H. et A.: (Bos.) = Dex-

icrates robustus (M), Polycaon chilensis (M);

(Bup.) = Anthaxia concinna (M), Anthaxia mau-

lica (M), Polycesta costata (M); (Cer.) = Ancylo-

dontatristis (V), Callideriphus laetus (M), Oectrop-

sis latifrons (M); (Cur.) = Apocnemidophorus ob-

soletus (M), Apocnemidophorus pruinosus (M),

Apocnemidophorus variegatus (M).

Schinus sp.: (Cer.) = Xenocompsa semipolita (M).

Schinus latifolius (Gill. ex Lindl.) Engler: (Bup.) =

Anthaxia concinna (M), Anthaxia maulica (M),

Anthaxia obscurata (M); (Cer.) = Ancylodonta

tristis (V), Callideriphus laetus (M), Callideriphus

transversalis (M), Oectropsis latifrons (M), Phyma-

tioderus bizonatus (M), Tyllomorpha lineoligera

(M), Xenocompsa semipolita (M); (Cur.) =

Apocnemidophorus obsoletus (M), Apocnemido-

phorus pruinosus (M), Apocnemidophorus vari-

egatus (M).

Schinus molle L. var. areira (L.) D.C.: (Bup.) =

Anthaxia concinna (M); (Cer.) = Phymatiodenus

bizonatus (M).

Schinus patagonicus (Phil.) Johnst.: (Cer.) =

Ancylodonta tristis (V), Oectropsis latifrons (M).

Schinus polygamus (Cav.) Cabr.: (Anob.) = Ca-

lymmaderus sp. (M); (Bos.) = Dexicrates robustus

(M); (Bup.) = Anthaxia concinna (M), Anthaxia

maulica (M), Anthaxia obscurata (M), Tyndaris

planata (M); (Cer.) = Ancylodonta tristis (V),

Callideriphus laetus (M), Oectropsis latifrons (M),

Phymatioderus bizonatus (M), Xenocompsa fla-

vonitida (M).

Schinus velutinus (Turcz) Johnst.: (Cer.) = An-

cylodonta tristis (V), Oectropsis latifrons (M).

ARAUCARIACEAE

Araucaria angustifolia (Bert.) OK.: (Cer.) =

Nathrius brevipennis (M), Huequenia araucana

(M).

Araucaria araucana (Mol.) K. Koch.: (Cer.) =

Epipodocarpus andinus (M), Estola hirsutella (M),

Huequenia araucana (M), Huequenia livida (M),

Microplophorus pegnai (M), Paraholopterus

nahuelbutensis (V), Parandra araucana (M), Syl-

litus schajovskoii (M); (Cur.) = Araucarius sp.

(M), Araucarius major (M), Araucarius minor

(M), Blasthophagus destructor (M), Calvertius

tuberosus (M), Hylurgonothus brunneus (M);

(Oed.) = Platylytra viticolle (M).

Araucaria bidwilli Hook: (Cer.) = Huequenia

araucana (M).

ASTERACEAE

Acrisione denticulata (H. et A.) B. Nordenstam.:

(Cer.) = Neohebestola petrosa (V).

Baccharis concava (R. et P.) Pers.: (Bup.) =

Dactylozodes conjuncta (V), Dactylozodes con-

juncta stenoloma (V), Dactylozodes rouleti con-

fusa (V), Dactylozodes rousseli rousseli (V), Trig-

onogenium biforme (V), Trigonogenium biforme

forma modestus (V); (Cer.) = Hephaestion

holomelas (V).

Baccharis linearis (R. et P.) Pers.. (Bos.) = Micra-

pate scabrata (M); (Bup.) = Anthaxia maulica

(M), Dactylozodes conjuncta (V), Dactylozodes

conjuncta stenoloma (V), Dactylozodes rouleti

confusa (V), Trigonogenium sp. (V), Trigono-

genium angulosum ruginosum (V), Trigonogenium

angulosum forma aurulenta (V), Trigonogentum

biforme forma modestus (V); (Cer.) = Hephaes-

tion holomelas (V), Neohebestola humeralis (M),

Neohebestola vitticollis (M).

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 75

Baccharis rhomboidalis Remy: (Bup.) = Dacty-

lozodes conjuncta (V), Dactylozodes conjuncta

semivittata (V), Dactylozodes rouleti confusa (V),

Trigonogenium biforme (V), Trigonogenium bi-

forme forma modestus (V); (Cur.) = Rhyephenes

squamiger (V).

Chryssanthemum coronarium L.: (Bup.) = Dacty-

lozodes rouleti (V).

Chuquiraga oppositifolia D. don.: (Bup.) = Dac-

tylozodes rouleti confusa (V).

Encelia canescens var. oblongifolia (D.C.) Blake:

(Anob.) = Xyletinus sp. (M); (Bup.) = Ectinogo-

nia buqueti intermedia (V); (Cer.) = Neohebestola

luchopegnai (M), Neohebestola vitticollis (M).

Eupatorium glechonophyllum Less.: (Bup.) =

Dactylozodes rouleti confusa (V).

Eupatorium salviae Colla: (Bup.) = Dactylozodes

conjuncta stenoloma (V); (Cer.) = Cleptonotus

subarmatus (M), Hephaestion holomelas (V).

Gochnatia foliosa (D. Don.) Don. ex H. et A.:

(Bup.) = Dactylozodes conjuncta (V).

Haplopappus sp.: (Bup.) = Neocypetes guttulata

(M).

BERBERIDACEAE

Berberis sp.: (Cer.) = Callisphyris macropus (V).

Berberis empetrifolia Lam. (Cer.) = Callisphyris

odyneroides (V), Callisphyris uretai (V).

Berberis rotundifolia P. et E.: (Cur.) = Rhyephenes

humeralis (M).

BETULACEAE

Betula sp.: (Cer.) = Callisphyris macropus (V),

Callisphyris apicicornis (V).

Betula pendula Rothm.: (Cer.) = Callisphyris

macropus (V), Callisphyris apicicornis (V), Xeno-

compsa flavonitida (M, V).

BORAGINACEAE

Heliotropium sp.: (Bup.) = Dactylozodes javierae

(V2).

Heliotropium stenophyllum H. et A.: (Bup.) =

Dactylozodes rouleti (V); (Cer.) = Grammicosum

larsoni (M).

BROMELIACEAE

Puya chilensis Mol.: (Cur.) = Pentarthrum sp. (M),

Pentarthrum castaneum (M), Pentarthrum opazoi

(M); (Sca.) = Oryctomorphus maculicollis (M).

CACTACEAE

Copiapoa cinerea (Phil.) B. et R. var. columna-

alba (Ritter) Back.: (Bup.) = Ectinogonia darwini

(v).

Pyrrhocactus sp.: (Bup.) = Ectinogonia

chalybaetventris (V).

CAESALPINIACEAE

Parkinsonia aculeata L.: (Bup.) = Anthaxia

concinna (M); (Cer.) = Xenocompsa flavonitida

(M).

Senna cummingl (H. et A.) Irw. et Bar. var. co-

quimbensis (Vogel) Irw. et Bar.: (Bos.) = Chilentus

spinicollis (M); (Bup.) = Mastogenius parallelus

(M); (Cer.) = Grammicosum larsoni (M), Xeno-

compsa flavonitida (M); (Cur.) = Rhyephenes

squamiger (V), Xylechinus sp. (M).

Senna muliiglandulosa (Jacq.) Irw. et Barn..: (Bup.)

= Anthaxia concinna (M), Anthaxia maulica (M);

(Cer.) = Grammicosum larsoni (M); (Cur.) =

Rhyephenes squamiger (M).

CAMPANULACEAE

Lobelia excelsa Bonpl.: (Cer.) = Acanthinodera

cummingl (M), Neohebestola petrosa (V); (Cur.)

= Pentarthrum huttoni (M), Pityopthorus corticalis

(M).

CASUARINACEAE

Casuarina cunninghamiana Mig.: (Cer.) = Cal-

76 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

lisphyris apicicornis (V).

CELASTRACEAE

Maytenus boaria Mol.: (Anob.) = Calymmaderus

sp. (M); (Bup.) = Anthaxia concinna (M), An-

thaxia maulica (M), Mastogenius sulcicollis (M),

Pygicera scripta (M); (Cer.) = Acanthinodera

cummingi (M), Callideriphus laetus (M), Hephaes-

tion lariosi (V), Hephaestion violaceipennis (V),

Hesperophanes philippi (M), Strongylaspis limae

(M), Tyllomorpha lineoligera (M), Xenocompsa

semipolita (M).

Maytenus magellanica (Lam.) Hook: (Cer.) = Ch-

enoderus testaceus (V, M).

CHENOPODIACEAE

Atnplex sp.: (Bup.) = Ectinogonia sp. (M).

CUPRESSACEAE

Austrocedrus chilensis (D. Don.) Pic. et Bizz.:

(Bup.) = Anthaxia cupriceps (M).

EBENACEAE

Diospyros kaka L.. (Bup.) = Tyndaris planata (M).

ELAEOCARPACEAE

Aristotelia chilensis (Mol.) Stuntz: (Cer.) = An-

cylodonta tristis (M, V), Callideriphus laetus (M),

Neohebestola humeralis (M), Xenocompsa fla-

vonitida (M).

EPHEDRACEAE

Ephedra breana Phil.: (Cer.) = Neotaphos rachelis

(Y).

Ephedra chilensis C. Presl: (Bup.) = Atacamita

chiliensis (M), Dactylozodes conjuncta (V); (Cer.)

= Neotaphos rachelis (V).

ERICACEAE

Pernettya sp.: (Bup.) = Conognatha viridiventris

vindiventris (V).

Pemettya mucronata (L.F.) Gaud. ex Spreng.:

(Bup.) = Conognatha viridiventris sagittaria (V);

(Cer.) = Hephaestion ocreatum (V).

EUPHORBIACEAE

Adenopeltis serrata (W. Aiton) Johnst.: (Cer.) =

Necydalopsis iridipennis (M).

Avellanita bustillosi Phil.: (Cer.) = Tyllomorpha

lineoligera (M).

Colliguaya oedorifera Mol.: (Bup.) = Anthaxia

maulica (M).

FAGACEAE

Nothofagus antarctica (G. Forst.) Oerst.: (Bup.) =

Conognatha chalybaeiventris (M), Mendizabalia

germaini germaini (M), Pterobothris corrosus (V);

(Cer.) = Adalbus crassicornis (V), Callisphyris

semicaligatus (V), Calydon globithorax (M), Mi-

croplophorus magellanicus (M), Oxypeltus qua-

drispinosus (V).

Nothofagus dombeyi (Mirb.) Oerst: (Bup.) =

Anthaxia maulica (M), Anthaxia verecunda (M),

Anthaxioides aurora (V), Conognatha

chalybaeofasciata (M), Conognatha chalybaeiven-

tris (M), Epistomentis pictus (M), Hypoprasis ele-

gans elegans (V), Hipoprasis elegans harpagon (V),

Philandia valdiviana (V?); (Cer.) = Achenoderus

octomaculatus (M), Azygocera picturata (M), Cal-

lideriphus laetus (M), Callisphyris asphaltinus (V),

Callisphyris semicaligatus (V), Calydon

havrylenkoi (M), Calydon submetallicum (M),

Chenoderus bicolor (M), Chenoderus tricolor (M),

Chenoderus venustus (M), Exocentrus pusillus

(M), Grammicosum flavofasciatum (M),

Hephaestion bullocki (V), Hesperophanes insper-

gatus (M), Hesperophanes philippi (M), Hespero-

phanes sulcicomis (M), Microplophorus magel-

lanicus (M), Necydalopsis barriai (M), Oxypeltus

quadrispinosus (V), Planopus sp. (V), Platynocera

lepturoides (V), Vilchesia valencial (M); (Cur.) =

Rhyephenes humeralis (M); (Sca.) = Oryctomor-

phus bimaculatus (M).

Nothofagus obliqua (Mirb.) Oerst.: (Bup.) =

Anthaxia maulica (M), Anthaxia verecunda (M),

Conognatha chalybaeiventris (M), Mastogenius

sulcicollis (M); (Cer.) = Calydon submetallicum

(M), Callideriphus laetus (M), Chenoderus bicolor

(M), Chenoderus tricolor (M), Exocentrus pusillus

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 77

(M), Grammicosum flavofasciatum (M), Hespero-

phanes philippi (M), Hesperophanes sulcicornis

(M), Holopterus chilensis (V), Necydalopsis barriai

(M), Pseudocephalus monstrosus (M), Xeno-

compsa flavonitida (M), Xenocompsa semipolita

(M); (Sca.) = Oryctomorphus bimaculatus (M),

Oryctomorphus laevipennis (M).

Nothofagus pumilio (P. et E.) Krasser: (Bup.) =

Conognatha chalybaeiventris (V), Epistomentis

pictus (M), Hypoprasis elegans elegans (V), Hypo-

prasis elegans harpagon (V); (Cer.) = Azygocera

picturata (M), Callisphyris semicaligatus (V),

Calydon havrylenkoi (M), Calydon submetallicum

(M), Chenoderus venustus (M), Exocentrus pusil-

lus (M), Microplophorus magellanicus (M),

Oxypeltus quadrispinosus (V), Phymatioderus

bizonatus (M), Planopus laniniensis (V), Vilchesia

valenciai (M); (Sca.) = Oryctomorphus bimacula-

tus (M).

Quercus robur L.: (Cer.) = Acanthinodera cum-

mingl (M), Grammicosum flavofasciatum (M),

Strongylaspis limae (M).

FLACOURTIACEAE

Azara celastrina D. Don.: (Bup.) = Anthaxia chlo-

ris (M), Conognatha azarae fisheri (V); (Cer.) =

Ancylodonta nitidepennis (V).

FRANKENIACEAE

Frankenia chilensis Presl.: (Bup.) = Atacamita

chiliensis (M), Ectinogonia sp. (V).

HYDRANGEACEAE

Hidrangea serratifolia (H. et A.) f. Phil.: (Cer.) =

Aconoptenius cristatipennis (M).

JUGLANDACEAE

Junglans regia L.: (Cer.) = Nathrius brevipennis

(M).

LAURACEAE

Beilschmiedia miersii (Gay) Kost.: (Cer.) = Acan-

thinodera cummingi (M).

Cryptocarya alba (Mol.) Looser: (Bos.) = Dex-

icrates robustus (M), Prostephanus sulcicollis (M);

(Bup.) = Anthaxia concinna (M), Anthaxia mau-

lica (M), Polycesta costata (M); (Cer.) = Acanthi-

nodera cummingi (M), Callideriphus laetus (M),

Callideriphus transversalis (M), Hesperophanes

philippi (M), Phymatioderus bizonatus (M), Stron-

gylaspis limae (M).

Laurus nobilis L.: (Cer.) = Xenocompsa flavoni-

tida (M).

Persea americana Miller.: (Bos.) = Polycaon

chilensis (M); (Bup.) = Anthaxia maulica (M);

(Cer.) = Phymatiodenis bizonatus (M), Nathrius

brevipennis (M), Strongylaspis limae (M); (Cur.) =

Rhyephenes squamiger (M); (Sca.) = Oryctomor-

phus bimaculatus (M).

MALVACEAE

Cnistaria sp.: (Anob.) = Cerocosmus sp. (M);

(Bup.) = Ectinogonia buqueti gutierrezi (V, M).

Cnstaria cyanea Phil.: (Bup.) = Ectinogonia sp.

(M).

Cnstaria patens Phil.: (Bup.) = Ectinogonia sp.

(M).

Cristaria pinnata Phil.: (Bup.) = Ectinogonia

buqueti gutierrezi (V, M); (Cer.) = Neohebestola

vitticollis (M); (Cur.) = Cnemecoelus sp. (M);

(Oed.) = Nacerdes sp. (M).

MIMOSACEAE

Acacia caven (Mol.) Mol.: (Anob.) = Calymmad-

erus sp. (M); (Bos.) = Dexicrates robustus (M);

(Bup.) = Anthaxia concinna (M), Mastogenius

sulcicollis (M), Neocypetes guttulata (M), Tyndaris

planata (M); (Cer.) = Achryson lineolatum (M),

Grammicosum larsoni (M), Grammicosum macu-

licorne (M), Grammicosum signaticolle (M), Phy-

matioderus bizonatus (M), Tyllomorpha line-

oligera (M); (Cur.) = Pentarthrum huttoni (M).

Acacia dealbata Link.: (Cer.) = Grammicosum

flavofasciatum (M).

Acacia saligna Wendl.: (Cur.) = Pentarthrum sp.

(M).

78 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Prosopis chilensis (Mol.) Stuntz: (Bos.) = Micra-

pate scabrata (M); (Bup.) = Anthaxia concinna

(M), Neocypetes guttulata (M), Tyndaris planata

(M).

MISODENDRACEAE

Misodendrum quadriflorum D.C.: (Cer.) =

Neohebestola humeralis (M).

MOKACEAE

Ficus carica L.: (Bos.) = Micrapate scabrata (M);

(Cer.) = Callideriphus laetus (M), Grammicosum

signaticolle (M), Nathrius brevipennis (M), Xeno-

compsa flavonitida (M).

MYRTACEAE

Accra sellowiana (O. Berg) O. Berg.: (Cer.) =

Callisphyris apicicomnis (V).

Eucalyptus sp.: (Cer.) = Strongylaspis limae (M).

Eucalyptus globulus Labill.: (Bos.) = Polycaon

chilensis (M); (Cer.) = Grammicosum flavofascia-

tum (M), Phoracantha semipunctata (M), Stron-

gylaspis limae (M).

Luma apiculata (DC.) Burret: (Cer.) = Callisphy-

ris apicicornis (V).

Myrceugenia exsucca (DC.) Berg.: (Cer.) = Holop-

terus annulicomnis (V).

Myrceugenia aff. montana Kausel: (Cer.) = Holop-

terus annulicomnis Phil. (V).

Myrceugenia obtusa (DC.) Berg.: (Cer.) = Chenod-

erus bicolor (M), Holopterus annulicomis (V).

Myrceugenta aff. ovata (H. et A.) Berg. var. nanno-

phylla (Burret) Landrum.: (Cer.) = Holopterus an-

nulicomis (V).

Myrceugenia planipes (H. et A.) Berg.: (Cer.) =

Holopterus annulicornis (V).

Myrceugenia rufa (Colla) Skottsb.: (Cer.) = Holop-

terus annulicornis (V).

Myrceugentia sp.: (Cer.) = Holoptenis annulicomis

(V), Xenocompsa semipolita (M).

Myrteola leucomyrtillus (Griseb.) Reiche: (Cer.) =

Holopterus annulicornis (V).

PAPILIONACEAE

Adesmia argentea Meyen: (Cer.) = Xenocompsa

martinsi (M); (Cur.) = Xylechinus sp. (M).

Adesmia confusa Ulib.: (Bup.) = Mastogenius

sulcicollis (M); (Cer.) = Callideriphus collaris

(M), Tyllomorpha lineoligera (M).

Adesmia microphylla H. et A.: (Bup.) = Ectinogo-

nia chalybaeiventris (V), Mastogenius sulcicollis

(M), Mastogenius sp. (M): (Cer.) = Calliderphus

collaris (M), Tyllomorpha lineoligera (M), Xeno-

compsa martinsi (M); (Cur.) = Xylechinus sp. (M).

Adesmia pinifolia Gill. ex H. et A.: (Bup.) =

Dactylozodes picta (V).

Adesmia pungens Clos.: (Bup.) = Ectinogonia

buqueti gutierrezi (V).

Adesmia viscosa Gill. ex H. et A.: (Bup.) = Dac-

tylozodes bifasciatus (V).

Geoffroea decorticans (Gill. ex H. et A.) Johnst.:

(Bup.) = Neocypetes guttulata (M): (Cer.) =

Achryson lineolatum (M).

Otholobium glandulosum (L.) Grimes: (Cur.) =

Xylechinus sp. (M).

Robinia pseudoacacia L.: (Bos.) = Dexicrates

robustus (M); (Bup.) = Anthaxia concinna (M),

Anthaxia maulica (M), Neocypetes guttulata (M),

Tyndaris planata (M); (Cer.) = Grammicosum

flavofasciatum (M), Grammicosum signaticolle

(M).

Sophora macrocarpa J.E.Sm.: (Cer.) = Neohebe-

stola humeralis (M).

Wisteria sinensis (Sims.) Sweet: (Bos.) = Micra-

pate scabrata (M); (Cer.) = Nathrius brevipennis

(M), Xenocompsa flavonitida (M).

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile TE

PASSIFLORACEAE

Passiflora coerulea L.: (Bos.) = Micrapate

scabrata (M).

PINACEAE

Pinus sp.: (Bup.) = Anthaxia concinna (M),

Buprestis novemmaculata (M); (Cer.) = Colobura

albolagiata (M).

POACEAE

Chusquea culeou Desv.: (Anob.) = Hadrobregmus

sp. (M); (Bel.) = Dicordylus marmoratus (M);

(Bos.) = Dexicrates robustus (M), Lyctus Sp. (M),

Micrapate scabrata (M), Neoterius mystax (M);

(Cer.) = Platynocera virescens (V).

Chusquea cummingi Nees: (Cer.) = Platynocera

virescens (V).

PODOCARPACEAE

Prumnopitys andina (Poepp. ex End.) de Laub.:

(Cer.) = Microplophorus pegnai (M), Parandra

araucana (M), Syllitus schajovskoil (M).

POLYGONACEAE

Muehlenbeckia hastulata (Smith) Johnst.: (Cur.)

= Xylechinus sp. (M).

PROTEACEAE

Gevuina avellana Mol.: (Bos.) = Lyctus sp. (M).

RHAMNACEAE

Colletia hystric Clos.: (Bup.) = Chrysobothris

bothrideres (V), Chrysobothris bothrideres

pehuenche (V), Conognatha costipennis (V),

Tyndaris marginella (M), Tyndaris planata (M);

(Cer.) = Callisphyris molorchoides (V), Grammi-

cosum signaticolle (M), Phymatioderus bizonatus

(M), Xenocompsa flavonitida (M).

Colletia ulicina Gill. et Hook: (Bup.) =

Chrysobothris bothrideres (V), Chrysobothris

bothrideres pehuenche (V); (Cer.) = Callisphyris

molorchoides (V).

Discaria chacaye (G. Don) Tortosa: (Bup.)

Chrysobothris bothrideres pehuenche (V); (Cer.)

Callisphyris molorchoides (V).

Discaria trinervis (H. et A.) Reiche.: (Cer.)

Callisphyris molorchoides (V).

Retanilla ephedra (Ven.) Brongn.: (Bup.)

Chrysobothris bothrideres (V); (Cer.) = Callisphy-

ris molorchoides (V), Platynocera andina (V).

Retanilla stricta H. et A.: (Cer.) = Callisphyris

molorchoides (V).

Trevoa trinervis Miers.: (Bup.) = Chrysobothris

bothrideres (V), Tyndaris marginella (M), Tyndaris

planata (M); (Cer.) = Callisphyris molorchoides

(V), Tyllomorpha lineoligera (M), Xenocompsa

flavonitida (M).

Trevoa spinifer Clos.: (Cer.) = Callisphyris mol-

orchoides (V).

ROSACEAE

Cotoneaster franchetti Bois: (Cer.) = Callideriphus

laetus (M), Callisphyris apicicornis (V).

Crataegus oxycantha L.: (Bup.) = Anthaxia mau-

lica (M); (Cer.) = Callideriphus laetus (M), Cal-

lisphyris apicicomis (V), Strongylaspis limae (V).

Cydonia oblonga Mill.: (Bup.) = Anthaxia

concinna (M); (Cer.) = Callideriphus laetus (M),

Callisphyris apicicornis (V), Callisphyris macropus

(V), Grammicosum signaticolle (M), Nathrius

brevipennis (M), Xenocompsa flavonitida (M).

Eniobotrya japonica (Thunb.) Linal.: (Bos.) =

Polycaon chilensis (M); (Cer.) = Strongylaspis

limae (M): (Sca.) = Oryctomorphus bimaculatus

(M).

Malus communis L.: (Bos.) = Dexicrates robustus

(M); (Bup.) = Anthaxia concinna (M); (Cer.) =

Callideriphus laetus (M), Callisphyris apicicornis

(V), Callisphyris macropus (V); (Cur.) = Scolytus

rugulosus (M), Xyleborinus saxesent (M).

Prunus avuwm L.: (Bup.) = Anthaxia concinna

(M); (Cer.) = Callideriphus laetus (M).

80 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Prunus domestica L.: (Cer.) = Callideriphus laetus

(M), Nathrius brevipennis (M); (Cur.) = Scolytus

rugulosus (M).

Prunus dulcis (Mill.) Webb.: (Cur.) = Scolytus

rugulosus (M).

Prunus persica (L.) Batsch.: (Bos.) = Dexicrates

robustus (M); (Cur.) = Scolytus rugulosus (M),

Xyleborinus saxeseni (M).

Pyracantha coccinea Roem.: (Cer.) = Callid-

eriphus laetus (M), Callisphyris apicicomis (V).

Pyrus communis L.: (Bos.) = Dexicrates robustus

(M); (Bup.) = Anthaxia concinna (M); (Cer.) =

Callideriphus laetus (M).

Quillaja saponaria Mol.: (Bos.) = Prostephanus

sulcicollis (M); (Bup.) = Anthaxia concinna (M),

Anthaxia maulica (M); (Cer.) = Callideriphus

laetus (M), Callidenphus maculatus (M), Callid-

eriphus niger (M), Calydon submetallicum (M),

Grammicosum minutum (M), Phymatioderus

bizonatus (M), Strongylaspis limae (M).

Rosa sp. (Cer.) = Callisphyris apicicornis (V).

Rosa moschata Herrm.: (Cer.) = Callisphyris

apicicomnis (V), Callisphyris macropus (V).

Rubus idaeus L.: (Cer.) = Callisphyris macropus

(v).

Rubus ulmifolius Schott: (Bos.) = Micrapate

scabrata (M); (Cer.) = Callisphyris apicicomnis (V),

Emphytoecia alboliturata (M), Neohebestola

humeralis (M).

SALICACEAE

Populus nigra L. var. italica (Minchh) Koehn:

(Bup.) = Trachypteris picta decastigma (M); (Cer.)

= Acanthinodera cummingl (M), Grammicosum

flavofasciatum (M).

Populus simonii Carr.: (Bup.) = Trachypteris picta

decastignma (M).

Salix babylonica L.: (Bup.) = Trachypteris picta

decastigna (M); (Cer.) = Callideriphus laetus (M);

(Cur.) Rhyephenes sp. (M); (Sca.) = Oryctomor-

phus maculicollis (M).

Salix viminalis L.: (Cer.) = Callideriphus laetus

(M).

SAXIFRAGACEAE

Escallonia angustifolia K. Presl. var. coquimbensis

(Remy) Acevedo et Kausel: (Bup.) = Conognatha

leechi (V).

Escallonia virgata (R. et P.) Pers.: (Bup.) =

Conognatha germaini (V).

Ribes polyantes Phil.: (Cer.) = Callisphyris api-

cicomnis (V).

Ribes trilobum Meyen: (Cer.) = Callisphyris

macropus (V).

SOLANACEAE

Cestrum parqui L”Her.: (Cur.) = Pentarthrum

huttoni (M).

Fabiana imbricata R. et P.: (Bup.) = Trigono-

genium angulosum ruginosum (V).

TAXODIACEAE

Sequoia sempervirens L.: (Bup.) = Anthaxia cu-

priceps (M).

ULMACEAE

Ulmus sp.: (Cer.) = Callisphyris apicicomis (V).

Ulmus carpinifolia Gledit.: (Cer.) = Strongylaspis

limae (M).

VERBENACEAE

Diostea juncea (Gill. et Hook.) Miers.: (Bup.) =

Conognatha souverbii (V); (Cer.) = Hephaestion

pallidicomnis (V).

VITACEAE

Cissus striata R. et P.: (Cer.) = Necydalopsis

indipennis (M); (Cur.) = Neomagdalis unicolor

(M).

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 81

Vitis vinifera L.: (Bos.) = Dexicrates robustus (M),

Micrapate scabrata (M); (Cer.) = Callideriphus

laetus (M).

ZYGOPHYLLACEAE

Porliería chilensis Johnst.: (Bup.) = Atacamita

chiliensis (M), Trigonogenium sp. (V); (Cer.) =

Grammicosum larsoni (M), Grammicosum macu-

licorne (M).

IM. Coleópteros xilófagos y hospederos citados

previamente. Se indica especie huésped (ordena-

das por familia), seguido de la planta hospedera,

su condición [(V), vivo; (M), muerto; (-), no

especifica condición], y referencia bibliográfica.

ANOBIIDAE

Emobius mollis L.: Pinus radiata D. Don (M)

(Billing y Holsten, 1969 a y b); (V) (Billing y

Holsten, 1969 a; Gara et al., 1980).

Hadrobregmus incisicollis Pic.: Austrocednis

chilensis (M), Nothofagus dombeyi (M)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949).

BOSTRICHIDAE

Amphicerus comutus (Pallas): Olea europaea (-)

(González, 1989).

Dexicrates robustus (Bl.): Actinidia deliciosa (V),

Citrus sinensis (-), Eucalyptus sp. (M), Olea eu-

ropaea (-), Malus communis (-), Persea americana

(-), Pyrus communis (-), Vitis vinifera (V)

(González, 1989).

Micrapate scabrata (Er.): Chusquea sp. (-), Phrag-

mites sp. (-), Vitis vinifera (V) (González, 1989).

Neoterius mystax (Bl.): Acacia caven (M), Persea

lingue (-), Quillaja saponaria (M) (-) González,

1989); Vitis vinifera (-) (Porter, 1939; González,

1989).

BUPRESTIDAE

Anthaxia concinna Mannl..: Austrocedrus chilensis

(M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949).

Buprestis novemmaculata L.: Pinus radiata (M)

(Billing y Hosten, 1967 a y b; Gara et al, 1980).

Dactylozodes bifasciatus Moore: Adesmia resinosa

(V) (Moore, 1986).

Dactylozodes rouleti confusa (F. + G.): Flourencia

thourifera (-) (Moore, 1986).

Epistomentis pictus L. y G.: Nothofagus dombeyi

(M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Gara et al.,

1980), (-) (Peña, 1988); N. Alpina (M), N. obliqua

(M) (Gara et al., 1980).

Philandia araucana Kerr.: Nothofagus antarctica (-

) (Moore, 1985).

Pterobothris corrosus F. £ G.: Nothofagus pumilio

(V) (Moore y Cerda, 1986).

Pygicera scripta L. y G.: Maytenus boaria (-)

(Moore, 1981; Peña, 1988).

Pygicera scripta krahmeri Moore; Maytenus boaria

(-) (Moore, 1981, 1987).

CERAMBYCIDAE

Acanthinodera cummingi Hope: Acacia sp.

“aromo” (-) (Durán, 1963); A. dealbata (-)

(Angulo y Weigert, 1974); Crinodendron sp. (-)

(Duffy, 1960; Angulo y Weigert, 1974); C. patagua

(-) (Porter, 1933, 1938; Cerda, 1974); Cryptocarya

alba (-) (Duffy, 1960; Durán, 1963; Angulo y

Weigert, 1974), (M) (Gara et al., 1980); Drimys

winter (-) (Porter, 1933, 1938; Durán, 1963; Angulo

y Weigert, 1974; Cerda, 1974); Eucalyptus sp. (M)

(Duffy, 1960; Durán, 1963; Gara et al., 1980; Peña,

1988); E. globulus (-) (Porter, 1925, 1933, 1938;

Angulo y Weigert, 1974; Cerda, 1974); Myrceugenta

planipes (-) (Durán, 1963); Nothofagus dombeyi

(M) (Gara et al., 1980); N. obliqua (-) (Porter,

1933, 1938; Durán, 1963; Cerda, 1974; Cameron y

Peña, 1982); Olea europaea (-) (Porter, 1933, 1938;

Durán, 1963; Cerda, 1974); Persea americana (-)

(Porter, 1933, 1938; Durán, 1963; Cerda, 1974);

Peumus boldus (-) (Duffy, 1960; Angulo y Weigert,

1974); Pinus sp. (-) (Peña, 1988); P. pinaster (-)

(Duffy, 1960; Angulo y Weigert, 1974); P. radiata

(M) (Billing y Holsten, 1969 a y b; Gara et al., 1980;

Cameron y Peña, 1982); Populus sp. (-) (Porter,

1933, 1938; Duffy, 1960; Durán, 1963; Angulo y

Weigert, 1974); P. monilifera (-) (Cerda, 1974);

82 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

“luma” (-) (Durán, 1963); “Cocos (?)” (-) (Duffy,

1960).

Achenoderus octomaculatus (F. et G.): Notho-

fagus dombeyi (M) (Havrylenko y Winterhalter,

1949; Bosq, 1953; Nappl, 1979; Cameron y Peña,

1982), (-) (Duffy, 1960).

Achryson philippi Germ.: Prosopis tamarugo (-)

(Cerda, 1987).

Aconopterus cristatipennis Bl.: Gunnera chilensis

(M) (Duffy, 1960).

Adalbus crassicornis F. et G.: Nothofagus dombeyi

(V) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1953,

1953 b); N. antarctica (V), N. pumilio (V)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1953, 1953

b; Cameron y Peña, 1982).

Callideriphus laetus Bl.: Aristotelia chilensis (M)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1953);

Cryptocarya alba (M) (Durán, 1963); Eucalyptus

sp. (-) (Porter, 1938), (M) (Durán, 1963); Malus

communis (M) (Durán, 1963); Nothofagus

dombeyi (M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949;

Bosq. 1953; Durán, 1963; Cameron y Peña, 1982);

N. obliqua (M) (Cameron y Peña, 1982); Pinus

radiata (M) (Billing y Holsten, 1969 b); Quercus sp.

(M) (Durán, 1963); Rosa sp. (-) (Porter, 1938), (M)

(Durán, 1963).

Callisphyris macropus Newman: Berberis sp. (V)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949); Ribes sp. (V)

(Bosq, 1953; Duffy, 1960); Berberis sp. ("michay”)

(V), Berberis sp. ("calafate”) (V) (Bosq, 1953);

Berberis darwini (-), B. buxifolia (-), Rubus sp. (-

), Saxifraga sp. (-) (Duffy, 1960); (Cydonia oblonga

(-), Malus communis (-), Ribes rubrum (-), Rosa

centifolia (-) (Durán, 1963); Ribes sp. (”grosell-

ero”) (-), Rosa moschata (-), Rubus idaeus (-)

(González, 1989).

Callisphyris semicaligatus F. et G.: Castanea sp.

(V) (Bosq, 1953); Nothofagus alpina (V)

(Cameron y Peña, 1982); N. antarctica (V)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1953;

Cameron y Peña, 1982); N. dombeyi (V)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1953;

Duffy, 1960; Cameron y Peña, 1982); N. pumilio

(V) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1953).

Callisphyris vespa F. et G.: Accra sellowiana,

Malus communis (V) (González, 1989); Cydonia

oblonga (V) (González, 1989), (-) (Duffy, 1960);

Malus sp., Prunus sp. (V) (Cameron y Peña, 1982):

Ribes sp. (-) (Duffy, 1960).

Calydon globithorax (F. et G.): Nothofagus antarc-

tica (-) (Bosq, 1951b, 1953); N. dombeyi (-)

(Cameron y Peña, 1982).

Calydon havrylenkoi Bosq: Nothofagus dombeyi

(M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq,

1951b, 1953; Cameron y Peña, 1982); N. Antarctica

(M) (Bosq, 1951b, 1953; Cameron y Peña, 1982).

Calydon submetallicum (Bl.): Nothofagus antarc-

tica (M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq,

1951b, 1953; Cekalovic, 1954; Durán, 1963;

Cameron y Peña, 1982), ( V) (Cekalovic, 1954); N.

betuloides (-) (Cekalovic, 1954); N. dombeyi (M)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1951b,

1953; Duffy, 1960; Durán, 1963; Cameron y Peña,

1982), (V) (Bosq, 1953; Duffy, 1960; N. glauca (-

) (Gara etal., 1980); N. obliqua (M) (Duffy, 1960;

Cameron y Peña, 1982), (V) (Duffy, 1960).

Cheloderus childreni Hope: Nothofagus dombeyi

(V) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Bosq, 1953;

Durán, 1963; Cameron y Real, 1974; Peña, 1974;

Gara et al., 1978; Gara et al, 1980; Cameron y

Peña 1982), (-) (Duffy, 1960; Peña, 1988) N. obli-

qua (V) (Cameron y Real, 1974; Peña, 197%;

Cameron y Peña, 1982), (-) (Peña, 1988); Quercus

sp. (-) (Duffy, 1960).

Cheloderus penai Kuschel: Nothofagus antarctica

(-) (Duffy, 1960); N. pumilio (-) (Cameron y Peña,

1982; Gara et al., 1980).

Chenoderus bicolor F. et G.: Nothofagus pumilio

(M) (Cameron y Peña, 1982).

Chenoderus testaceus (Bl.): Eucalyptus globulus

(M) (Artigas, 1970; Napp, 1979); Nothofagus

dombeyi (M) (Cameron y Peña, 1982); N. obliqua

(-) (Duffy, 1960; Cameron y Peña, 1982).

Colobura alboplagiata Bl.: Pinus radiata (M) (Bill-

ing y Holsten, 1969b; Gara et al., 1980).

Eburia pilosa (Er.): Eucalyptus sp. (-) (Bosg,

1949); Ficus carica (-) (Duffy, 1960); Schinus

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 83

molle (-) (Bosq, 1949).

Epipodocarpus andinus Bosq: Araucaria araucana

(-) (Duffy, 1960).

Estola hirsutella Auriv.: Araucaria araucana (-)

(Peña, 1988).

Grammicosum flavofasciatum Bl.: Maytenus

boaria (-) (Bosq, 1953); Nothofagus dombeyi (M)

(Cameron y Peña, 1982; Bosq, 1953), (-) (Duffy,

1960); N. obliqua (-) (Bosq, 1953; Duffy, 1960;

Cameron y Peña, 1982); “palo santo” (-) (Bosq,

1953).

Grammicosum signaticolle Bl.: Acacia caven (-)

(Cekalovic y Solís, 1975); Robinia pseudoacacia (-

) (Porter, 1936; Duffy, 1960; Cekalovic y Solís,

1975).

Hephaestion ocreatum Newm.: Pernettya sp. (-)

(Bosq, 1953).

Holopterus chilensis Bl.: Nothofagus dombeyi (V)

(Gara et al, 1978; Gara et al, 1980; Cameron y

Peña); N. obliqua (V) (Gara et al., 19580; cameron

y Peña, 1982).

Huequenia livida (Germ.): Araucaria araucana

(M) (Porter, 1921), (-) (Duffy, 1960; Durán, 1963);

Araucaria sp. (-) (Porter, 1921).

Lautarus concinnus (Phil. ): Nothofagus antarctica

(V) (Bosq, 1953; Cekalovic, 1954; Havrylenko y

Winterhalter, 1949; Cameron y Peña, 1982); N.

dombeyi (V) (Cameron y Peña, 1982).

Leiopus asperipennis F. et G.: Ficus carica (V y M)

(Bosq, 1949).

Manipanus decoratus Germ.: Nothofagus dombeyi

(-) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Cameron y

Peña, 1982).

Microplophorus magellanicus Bl.: Austrocedrus

chilensis (M) (Hravylenko y Winterhalter, 1949;

Bosq, 1953; Cerda, 1974), (-) (Duffy, 1960); Not-

hofagus antarctica (M) (Havrylenko y Winterhalter,

1949; Bosq, 1953, Cekalovic, 1954; Cerda, 1974;

Cameron y Peña, 1982), (-) (Duffy, 1960); N.

betuloides (M) (Cekalovic, 1954; Cerda, 1974); N.

dombeyi (M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949;

Bosq, 1953; Cerda, 1974; Cameron y Peña, 1982),

(-) (Duffy, 1960); N. pumilio (M) (Bosq, 1953;

Cerda, 1974; Cameron y Peña, 1982); Lomatia

hirsuta (M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949;

Bosq, 1953; Cerda, 1974); “Lomatia oblicua” (-)

(Duffy, 1960); Pinus radiata (M) (Cameron y Peña,

1982).

Microplophorus pegnai Galileo: Araucaria arau-

cana (M) (Galileo, 1987); (-) (Bosq, 1951; Duffy,

1960; Cerda, 1974).

Nathrius brevipennis (Muls.): Morus sp. (M), Cas-

tanea sp. Ceratonia sp. C. siliqua, Corylus sp.,

Cupressus sp., Ficus sp., Junglans sp., Launus

nobnilis, Ligustrum sp., Olea sp., Pinus halepensis,

Pinus sp., Pistacia lentiscus, Prunus sp., Quercus

mirbecki, Quercus sp., Robinia sp., Rosa canina,

Rosa sp., Salix sp., Viburum opulus, Wisteria

sinensis (-) (Duffy, 1960).

Neoclytus jekeli (White): Eucalyptus sp. (-) (Bosq,

1949).

Oxypeltus quadrispinosus Bl.; Nothofagus alpina

(V) (Bosq, 1953; Cameron y Peña, 1982); N. ant-

arctica (V) (Cameron y Peña, 1982); N. dombeyi

(V) (Bosq, 1953; Havrylenko y Winterhalter, 1949;

Cameron y Peña, 1982), (-) (Duffy, 1960); N.

pumilio (V) (Bosq, 1953; Cameron y Peña, 1982),

(-) (Duffy, 1960).

Oectropsis latifrons Bl.: Lithrea caustica (-) (Duffy,

1960).

Parandra araucana Bosq: Araucaria araucana (M)

(Bosq, 1951; Peña, 1960), (-) (Duffy, 1960; Peña,

1988).

Phoracanta semipunctata (Fab.): Eucalyptus sp.

(V) (Gara et al., 1980; Santa-Cruz, 1978), (M)

(Duffy, 1960; Santa-Cnuz, 1978); E. camaldulensis,

E. globulus (-) (González, 1989), (M) (Duffy, 1960;

Santa-Cruz, 1975); E. diversicolor, E. robusta, E.

saligna, E. viminalis (M) (Duffy, 1960; Santa-Cruz,

1978); E. crebra. E. leucoxylon, E. longifolia, E.

salubris, E. sideroxylon, E. tereticomnis, E. triantha

(M) (Duffy, 1960); E. gomphocephala, E. occiden-

talis (M) (Santa-Cruz, 1978).

Phymatioderus bizonatus Bl.: Eucalyptus sp. (-)

(Porter 1939; Duffy, 1960); Nothofagus dombeyi

84 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

(M) (Havrylenko y Winterhalter, 1949; Cameron y

Peña, 1982); Lithrea caustica, Quercus peduncula

(-) (Duffy, 1960).

Planopus laniniensis Bosq.; Nothofagus dombeyi

(V) (Cameron y Peña, 1982).

Planopus octaviusbarrosi Cerda; Nothofagus

dombeyi (V) (Cameron y Peña, 1982).

Platynocera lepturoides Bl.; Nothofagus dombeyi

(V) (Cameron y Peña, 1982).

Platynocera virescens F. et G.; Chusquea quila (-)

(Krahmer, 1990).

Psalidognathus germaini dumfordi (Burn.);

Mulinum spinosum (-), Senecio sp. (-) (Cerda,

1974).

Sibylla coemeterii (Thoms.); Nothofagus antarc-

tica (-) (Duffy, 1960); N. dombeyi (V) (Duffy,

1960), (-) (Cameron y Peña, 1982); N. obliqua (V)

(Cameron y Peña, 1982).

Sibylla flavosignata F. et G.; Nothofagus dombeyi

(-) (Cameron y Peña, 1982).

Sibylla integra F. et G.; Nothofagus dombeyi (V)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949; Cameron y Peña,

1982).

Sibylla livida Germ.; Nothofagus dombeyi (V)

(Peña, 1974; Cameron y Peña, 1982).

Strongylaspis limae (Guer.); Eucalyptus sp. (-)

(Gara et al., 1980); Maytenus boaria (-) (Porter,

1938; Gara et al., 1980); Quillaja saponaria (-)

(Germain, 1897; Porter, 1933, 1938; Duffy, 1960;

Gara et al, 1980; Peña, 1988).

Syllitus schajovskoii Bosq; Araucaria araucana (-

) (Peña, 1988).

Xenocompsa flavonitida (F. et G.); Nothofagus

dombeyi (-) (Cameron y Peña, 1982).

CURCULIONIDAE

Aegorhinus vitulus (Fab.); Nothofagus dombeyi

(-) (Havrylenko y Winterhalter, 1949).

Blastophagus antipodus Eggers; Araucaria arau-

cana (-) (Gara et al, 1980).

Blastophagus porter (Brethes); Araucaria arau-

cana (-) (Gara et al., 1980).

Calvertius tuberosus F. et G.; Araucaria araucana

(M) (Peña, 1988).

Hylastes ater (Paykull); Pinus radiata (-)

(González, 1989), (M, V) (Ciesla, 1988; Ojeda,

1985).

Hylastinus obscurus (Marsham); Trifolium prat-

ense (V) (González, 1989).

Hylesinus oleiperda F.; Olea europaea (-)

(González, 1989).

Hylesinus antipodus Schedl.; Olea europaea (-)

(González, 1989).

Hylurgonothus armaticeps Schedl.; Araucaria

araucana (-) (Gara et al., 1980).

Hylurgonothus brunneus Schedl.; Araucaria arau-

cana (-) (Gara et al., 1980).

Hylurgus ligniperda F.; Pinus radiata (M, V)

(Ciesla, 1988), (-) (González, 1989).

Nothofagobius brevirostris Kuschel; Nothofagus

dombeyi (V) (González, 1989); Ribes sp. (*gros-

ella”) (V) (González, 1989).

Orthotomicus erosus Wollaston; Pinus radiata (M,

V) (Ciesla, 1988).

Pagiocerus frontalis (F.); Zea mays (mazorca)

(González, 1989).

Phloeotribus willei Schedl; Ficus carica (-)

(González, 1989).

Psepholax dentipes (Boh.); Nothofagus obliqua

(M) (Gara et al, 1980).

Pteleobius humilis (Bl.); Araucaria araucana (-)

(Gara et al., 1980).

Pteleobius valdivianus (Eggers); Araucaria arau-

cana (-) (Gara et al., 1980).

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 85

Rhyephenes humeralis (Guer.); Pinus radiata (M)

(Billing y Holsten, 1969a y b); Prunus persica (-),

Juglans regia (-) (González, 1989).

Rhyephenes mallei Gay et Sol.; Pinus radiata (M)

(Billing y Holsten, 1969a y b); Nothofagus antarc-

tica (M), N. dombeyi (M), Maytenus boaria (M)

(Havrylenko y Winterhalter, 1949).

Scolytus rugulosus (Miiller); Malus communis

(M), Prunus armeniaca (-), P. avium (-), P. cera-

sus (-), P. domestica (-), P. dulcis (-), P. persica (-

) (González, 1989).

Xyleborinus saxeseni (Raíz. ); Malus communis (V)

(González, 1989); Pinus radiata (M) (Billing y

Holsten, 1969b; González, 1989), (V) (Gara et al.,

1980); Pyrus communis (-) (González, 1989).

Xylechinus xylographus; Araucaria araucana (-)

(Gara et al., 1980).

SCARABAEIDAE

Oryctomorphus bimaculatus Guer.; Pinus radiata

(M) (Billing y Holsten 1969b); Luma apiculata

(M), Nothofagus dombeyi (M) (Havrylenko y

Winterhalter, 1949).

IV. Plantas hospederas citadas previamente

(separadas por familia *) y sus especies

huéspedes indicando la condición de la madera

atacada [(V): viva; (M): muerta; (-): no especifica

condición].

* (Anob.): Anobidae; (Bos.): Bostrichidae;

(Bup.): Buprestidae; (Cer.): Cerambycidae;

(Cur.): Curculionidae; (Sca.): Scarabaeidae.

ACTINIDIACEAE

Actinidia deliciosa: (Bos.) = Dexicrates robustus

(v).

ANACARDIACEAE

Lithrea caustica: (Cer.) = Oectropsis latifrons (-),

Phymatioderus bizonatus (-).

Pistacia lentiscus: (Cer.) = Nathrius brevipennis

(-).

Schinus molle: (Cer.) = Eburia pilosa (-).

ARAUCARIACEAE

Araucaria sp.: (Cer.) = Huequenia livida (-)

Araucaria araucana: (Cer.) = Epipodocarpus

andinus (-), Estola hirsutella (-), Huequenia livida

(M), Microplophorus pegnai (M). Parandra arau-

cana (M), Syllitus schajovskoii (-); (Cur.) = Blas-

tophagus antipodus (-), Blastophagus porteri (-),

Calvertius tuberosus (M), Hylurgonothus ar-

maticeps (-), Hylurgonothus brunneus (-), Ptel-

eobius humilis (-), Pteleobius valdivianus (-),

Xylechinus xylographus (-).

ASTERACEAE

Flourencia thourifera: (Bup.) = Dactylozodes

rouleti confusa (-).

Mulinum spinosum: (Cer.) = Psalidognathus ger-

maini dumfordi (-).

Senecio sp.: (Cer.) = Psalidognathus germaini

dumfordi (-).

BERBERIDACEAE

Berberis sp.: (Cer.) = Callisphyris macropus (V).

Berberis sp. ("michay”): (Cer.) = Callisphyris

macropus (V).

Berberis sp. (“calafate”): (Cer.) = Callisphyris

macropus (V).

Berberis bwafolia: (Cer.) = Callisphyris macropus

(-).

Berberis darwini: (Cer.) = Callisphyris macropus

().

BETULACEAE

Corylus sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

CAESALPINIACEAE

Ceratonia sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Ceratonia siliqua: (Cer.) = Nathrius brevipennis

(-).

86 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

CAPRIFOLIACEAE

Viburmum opulus: (Cer.) = Nathrius brevipennis

(-).

CELASTRACEAE

Maytenus boaria: (Bup.) = Pygicera scripta (-),

Pygicera scripta krahmeri (-); (Cer.) = Grammi-

cosum flavofasciatum (-), Strongylaspis limae (-);

(Cur.) = Rhyephenes mallei (M).

CUPRESSACEAE

Austrocedrus chilensis: (Anob.) = Hadrobregmus

incisicollis (M); (Bup.): Anthaxia concinna (M);

(Cer.) = Microplophorus magellanicus (M).

Cupressus sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

ELAEOCARPACEAE

Aristotelia chilensis: (Cer.) = Callideriphus laetus

(M).

Crinodendron sp.: (Cer.) = Acanthinodera cum-

mingl (-).

Crinodendron patagua: (Cer.) = Acanthinodera

cummingl (-).

ERICACEAE

Pernettya sp.: (Cer.) = Hephaestion ocreatum (-).

FAGACEAE

Castanea sp.: (Cer.) = Callisphyris semicaligatus

(V), Nathrius brevipennis (-).

Nothofagus alpina: (Bup.) = Epistomentis pictus

(M); (Cer.) = Callisphyris semicaligatus (V),

Oxypeltus quadrispinosus (V).

Nothofagus antarctica: (Bup.) = Philandia arau-

cana (-); (Cer.) = Adalbus crassicornis (V), Cal-

lisphyris semicaligatus (V), Calydon globithorax (-

), Calydon havrylenkoi (M), Calydon submetalli-

cum (M, V), Cheloderus penai (-), Lautarus

concinnus (V), Microplophorus magellanicus (M),

Oxypeltus quadrispinosus (V), Sibylla coemeterii

(-); (Cur.) = Rhyephenes mallei (M).

Nothofagus betuloides: (Cer.) = Calydon submet-

allicum (-), Microplophorus magellanicus (M).

Nothofagus dombeyi: (Anob.) = Hadrobregmus

incisicollis (M); (Bup.): Epistomentis pictus (M);

(Cer.) = Acanthinodera cummingi (M), Achenod-

erus octomaculatus (M) (-), Adalbus crassicornis

(V), Callideriphus laetus (M), Callisphyris semi-

caligatus (V), Calydon globithorax (-), Calydon

havrylenkoi (M), Calydon submetallicum (M, V),

Cheloderus childreni (V), Chenoderus testaceus

(M), Grammicosum flavofasciatum (M), Holop-

terus chilensis (V), Lautarus concinnus (V), Mari-

panus decoratus (-), Microplophorus magellanicus

(M), Oxypeltus quadrispinosus (V), Phymatioderus

bizonatus (M), Planopus laniniensis (V), Planopus

octaviusbarrosi (V), Platynocera lepturoides (V),

Sibylla coemeterti (V), Sibylla flavosignata (-),

Sibylla integra (V), Sibylla livida (V), Xenocompsa

flavonitida (-); (Cur.) = Aegorhinus vitulus (-),

Nothofagobius brevirostris (V), Rhyephenes mallei

(M); (Sca.) = Oryctomorphus bimaculatus (M).

Nothofagus glauca: (Cer.) = Calydon submetalli-

cum (-).

Nothofagus obliqua: (Bup.) = Epistomentis pictus

(M); (Cer.) = Acanthinodera cummingl (-), Callid-

eriphus laetus (M), Calydon submetallicum (M, V),

Cheloderus childreni (V), Chenoderus testaceus (-

), Grammicosum flavofasciatum (-), Holopterus

chilensis (V), Sibylla coemeterii (V); (Cur.) =

Psepholax dentipes (M).

Nothofagus pumilio: (Bup.) = Pterobothris corro-

sus (V); (Cer.) = Adalbus crassicomis (V), Cal-

lisphyris semicaligatus (V), Cheloderus penal (-),

Chenoderus bicolor (M), Microplophorus magel-

lanicus (M), Oxypeltus quadrispinosus (V).

Quercus sp.: (Cer.) = Callideriphus laetus (M),

Cheloderus childreni (-), Nathrius brevipennis (-).

Quercus mirbecki: (Cer.) = Nathrius brevipennis

(-).

Quercus peduncula: (Cer.) = Phymatioderus bizo-

natus (-).

GUNNERACEAE

Gunnera chilensis: (Cer.) = Aconopterus cristati-

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 87

pennis (M).

JUGLANDACEAE

Juglans sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Juglans regia: (Cur.) = Rhyephenes humeralis (-).

LAURACEAE

Cryptocarya alba: (Cer.) = Acanthinodera cum-

mingl (M), Callideriphus laetus (M).

Laurus nobilis: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Persea americana: (Bos.) = Dexicrates robustus

(-); (Cer.) = Acanthinodera cummingl (-).

Persea lingue: (Bos.) = Neoterius mystax (-).

MIMOSACEAE

Acacia sp. “Aromo”: (Cer.) = Acanthinodera

cummingl (-).

Acacia caven: (Bos.) = Neoterius mystax (M);

(Cer.) = Grammicosum signaticolle (-).

Acacia dealbata: (Cer.) = Acanthinodera cum-

mingl (-).

Prosopis tamarugo: (Cer.) = Achryson philippi

(-).

MONIMIACEAE

Peumus boldus: (Cer.) = Acanthinodera cum-

mingl (-).

MYRTACEAE

Accra sellowiana: (Cer.) = Callisphyris vespa (V).

Eucalyptus camaldulensis: (Cer.) = Phoracantha

semipunctata (M).

Eucalyptus crebra: (Cer.) = Phoracantha semi-

punctata (M).

Eucalyptus diversicolor: (Cer.) = Phoracantha

semipunctata (M).

Eucalyptus gomophocephala: (Cer.) = Phoracan-

tha semipunctata (M).

Eucalyptus globulus: (Cer.) = Acanthinodera

cummingl (-), Chenoderus testaceus (M), Phora-

cantha semipunctata (M).

Eucalyptus leucoxylon: (Cer.) = Phoracantha

semipunctata (M).

Eucalyptus longifolia: (Cer.) = Phoracantha semi-

punctata (M).

Eucalyptus occidentalis: (Cer.) = Phoracantha

semipunctata (M).

Eucalyptus robusta: (Cer.) = Phoracantha semi-

punctata (M).

Eucalyptus saligna: (Cer.) = Phoracantha semi-

punctata (M).

Eucalyptus salubris: (Cer.) = Phoracantha semi-

punctata (M).

Eucalyptus sideroxylon: (Cer.) = Phoracantha

semipunctata (M).

Eucalyptus tereticomis: (Cer.) Phoracantha

semipunctata (M).

Eucalyptus triantha: (Cer.) = Phoracantha semi-

punctata (M).

Eucalyptus viminalis: (Cer.) = Phoracantha semi-

punctata (M).

Eucalyptus sp.: (Bos). = Dexicrates robustus (M);

(Cer.) = Acanthinodera cummingi (M), Callid-

eriphus laetus (M), Eburia pilosa (-), Neoclytus

jekeli (-), Phoracantha semipunctata (M, V),

Phymatioderus bizonatus (-), Strongylaspis limae

(-).

Luma apiculata: (Sca.) = Oryctomorphus bimacu-

latus (M).

Myrceugenia planipes: (Cer.) = Acanthinodera

cummingl (-).

“luma”: (Cer.) = Acanthinodera cummingl (-).

88 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

MORACEAE

Ficus sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Ficus carica: (Cer.) = Eburia pilosa (-), Leiopus

asperipennis (V, M); (Cur.) = Phloeotribus willei

(-).

Morus sp. (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

OLEACEAE

Ligustrum sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Olea sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Olea europaea: (Bos.) = Amphicerus comutus (-

), Dexicrates robustus (-); (Cer.) = 4canthinodera

cummingi (M); (Cur.) = Hylesinus oleiperda (-),

Hylesinus antipodus (-).

PALMACEAE

“Cocos” (?): (Cer.) = Acanthinodera cummingi

(-).

PAPILIONACEAE

Adesmia resinosa: (Bup.) = Dactylozodes bifas-

ciatus (V).

Robinia sp.: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Robinia pseudoacacia: (Cer.) = Grammicosum

signaticolle (-).

Tnfolium pratense: (Cer.) = Hylastinus obscurus

(V).

Wisteria sinensis: (Cer.) = Nathrius brevipennis

(-).

PINACEAE

Pinus sp.: (Cer.) = Acanthinodera cummingi (-),

Nathrius brevipennis (-).

Pinus halepensis: (Cer.) = Nathrius brevipennis

(-).

Pinus pinaster: (Cer.) = Acanthinodera cummingi

(-).

Pinus radiata: (Anob.) = Ermnobius mollis (M);

(Bup.) = Buprestis novemmaculata (M); (Cer.):

Acanthinodera cummingi (M), Callideriphus la-

etus (M), Colobura alboplagiata (M), Microplo-

phorus magellanicus (M); (Cur.) = Hylastes ater

(M, V), Hylurgus ligniperda (M, V), Orthotomicus

erosus (M, V), Rhyephenes humeralis (M),

Rhyephenes mallei (M), Xyleborinus saxeseni (M,

V); (Sca.) = Oryctomorphus bimaculatus (M).

POACEAE

Chusquea sp.: (Bos.) = Micrapate scabrata (-).

Chusquea quila: (Cer.) = Platynocera virescens

(-).

Phragmites sp.: (Bos.) = Micrapate scabrata (-).

Zea mays: (Cur.) = Pagiocerus frontalis (ma-

zorca).

PROTEACEAE

Lomatia hirsuta: (Cer.) = Microplophorus magel-

lanicus (M).

Lomatia oblicua: (Cer.) = Microplophorus magel-

lanicus (-).

ROSACEAE

Cydonia oblonga: (Cer.) = Callisphyris macropus

(-), Callisphyris Vespa (V).

Malus sp.: (Cer.) = Callisphyris vespa (V).

Malus communis: (Bos.) = Dexicrates robustus (-

); (Cer.) = Callideriphus laetus (M), Callisphyris

macropus (-), Callisphyris vespa (V); (Cur.) =

Scolytus rugulosus (M), Xyleborinus saxeseni (V).

Prunus sp.: (Cer.) = Callisphyris vespa (V),

Nathrius brevipennis (-).

Prunus persica: (Cur.) = Rhyephenes humeralis

(-).

Prunus armeniaca: (Cur.) = Scolytus rugulosus

(-).

Prunus avium: (Cur.) = Scolytus rugulosus (-).

Barriga et al.: Antecedentes sobre coleópteros xilófagos de Chile 89

Prunus cerasus: (Cur.) = Scolytus rugulosus (-).

Prunus domestica: (Cur.) = Scolytus rugulosus

(-).

Prunus dulcis: (Cur.) = Scolytus rugulosus (-).

Prunus persica: (Cur.) = Scolytus rugulosus (-).

Pyrus communis: (Bos.) = Dexicrates robustus

(-); (Cur.) = Xyleborinus saxeseni (-).

Quillaja saponaria: (Bos.) = Neoterius mystax

(M); (Cer.) = Strongylaspis limae (-).

Rosa sp.: (Cer.) = Callideriphus laetus (M),

Nathrius brevipennis (-).

Rasa canina: (Cer.) = Nathrius brevipennis (-).

Rosa centifolia: (Cer.) = Callisphyris macropus

(-).

Rosa moschata: (Cer.) = Callisphyris macropus

(-).

Rubus sp.: (Cer.) = Callisphyris macropus (-).

Rubus idaeus: (Cer.) = Callisphyris macropus (-).

RUTACEAE

Citrus sinensis: (Bos.) = Dexicrates robustus (-).

SALICACEAE

Populus sp.: (Cer.) = Acanthinodera cummingi

(-).

Populus monilifera: (Cer.) = Acanthinodera

cummingl (-).

Salix sp.: (Cer.) =Nathrius brevipennis (-).

SAXIFRAGACEAE

Ribes sp. (”grosellero”): (Cer.) = Callisphyris

macropus (-); (Cur.) = Nothofagobius brevirostris

(V).

Ribes sp.: (Cer.) = Callisphyris macropus (V),

Callisphyris vespa (-).

Ribes rubrum: (Cer.) = Callisphyris macropus (-).

Saxafraga sp.: (Cer.) = Callisphyris macropus (-).

VITACEAE

Vitis vinifera: (Bos.) = Dexicrates robustus (V),

Micrapate scabrata (V), Neoterius mystax (-).

WINTERACEAE

Drimys winteri: (Cer.) = Acanthinodera cummingi

(-).

FAMILIA INDETERMINADA

“palo santo”: (Cer.) = Grammicosum flavofascia-

tum (-).

COMENTARIOS

Durante el estudio se obtuvieron 55 especies y

subespecies de Buprestidae, 80 de Cerambycidae,

24 de Curculionidae, 1 de Belidae, 6 de Ano-

biidae, 7 de Bostrichidae, 2 de Oedemeridae y 3

de Scarabaeidae en un total de 146 especies de

plantas pertenecientes a 50 familias botánicas.

En las especies criadas se ha determinado

hasta la fecha uno o más hospederos, esta-

bleciendo que algunas aparentemente

presentarían gran especificidad (Ej.: Platynocera

andina sólo en Retanilla ephedra, entre 8

ramnáceas prospectadas), otras se asocian a va-

rias especies pertenecientes a una familia de plan-

tas (Ej.: Oectropsis latifrons en 5 especies de

Anacardiaceae) y algunas son muy polífagas (Ej.:

Callideriphus laetus con 21 hospederos

pertenecientes a 9 familias, Anthaxia concinna

con 18 hospederos pertenecientes a 8 familias,

Callisphyris apicicornis con 15 hospederos

pertenecientes a 7 familias).

Algunas especies (en ocasiones todas las

pertenecientes a un mismo género, e incluso tribu,

como en Necydalini -Cerambycidae) fueron en-

contradas atacando solamente madera viva (Ej.:

Hephaestion spp., Callisphyris spp., Dactylozodes

spp.). Otras se encontraron afectando solamente

madera muerta (Ej.: Grammicosum spp., An-

thaxia spp., Calymmaderus spp.). Algunas pueden

ingresar por madera viva y continuar su desarrollo

en madera muerta, producto de su misma ac-

20 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

tividad larval (Ej.: Holopterus annulicomis).

En general los coleópteros xilófagos aso-

ciados a plantas nativas atacan ramas y ramillas

muertas, de manera que actúan como importan-

tes agentes descomponedores. En algunos casos

(Ej.: Lyctus sp. en Gevuina avellana) pueden

afectar la calidad de madera aserrada.

En cuanto a las especies que atacan madera

viva, estas frecuentemente no ocasionan daño

severo, sin embargo pueden afectar el normal

desarrollo de la planta (Ej.: Holoptenis

annulicornis en mirtáceas). Uno de los escasos

ejemplos de especies que ocasionan la muerte de

su hospedero es Ectinogonia sp. en Frankenia

chilensis y Cristaria spp., debido a que destruye

todo su sistema radical.

La mayoría de las especies detectadas en

plantas de importancia agrícola se encuentran en

madera muerta o en plantas muy debilitadas y/o

enfermas, con la excepción de Callisphyris api-

cicomis, C. macropus y C. semicaligatus, que

pueden eventualmente constituirse en plagas

ocasionales.

Del total de coleópteros nativos prospectados

(171 especies), un 15,2% (26 especies) se en-

contró sobre hospederos exóticos.

Considerando que los insectos prospectados

se detectaron en uno o más hospederos, se obtuvo

un total de 484 asociaciones huésped-hospedero.

AGRADECIMIENTOS

Los autores agradecen al Dr. Roberto González

R. y al Sr. Gerardo Barría P. por la revisión crítica

del manuscrito, al Ing. Agr. Sr. Luis Faúndez Y.

por la determinación de plantas hospederas, al Sr.

Mario Elgueta por la identificación de parte del

material de Coleoptera y sus consejos para la

redacción del manuscrito. Además se agradece a

la Corporación Nacional Forestal (CONAF) por

la cooperación prestada durante la prospección.

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| e

Ji:

NOTAS

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 93.

EL ACARO DEL TOSTADO DE LOS CITRICOS, PHYLLOCOPTRUTA OLEIVORA

(ASHMEAD) (ERIOPHYIDAE) NO ATACA OLIVOS NI EXISTE EN CHILE CONTINENTAL

RoBeErTO H. GONZÁLEZ

Departamento de Sanidad Vegetal,

Fac Cs. Agrarias y Forestales, Universidad de Chile,

Casilla 1004, Santiago - Chile.

La Ingeniero Agrónomo Sra. Lourdes Peralta del

Servicio Agrícola y Ganadero llamó mi atención

que en la Revista IDESIA, 11:53-55 (1989), se

había publicado una nota de los autores M.

Jiménez, H. Vargas, D. Bobadilla y P. Gallo,

quienes dieron cuenta de la presencia de Pl).

oleivora en olivos de Copiapó acompañándose

además el artículo de una microfotografía de un

eriófido y del daño de ramillas de olivo con las

hojas deformadas, atribuido a ese eriófido. La

justificación de esa investigación -un proyecto

FONDECYT- era “alertar a los agricultores de la

presencia de especies nuevas ingresadas” (en

olivos).

En atención a la grave inexactitud científica

de tal publicación deseo aclarar que la especie

Phyllocoptruta oleivora es una plaga mundial

absolutamente específica de los citrus (naranjas,

pomelos) causando el “tostado del fruto”, una

ruptura y vaciado celular de la epidermis en frutos

verdes, produciendo una fuerte oxidación del

tejido el cual adopta un fuerte tostado de la zona

necrosada. Ocurre exclusivamente en zonas tropi-

cales y subtropicales húmedas, siendo la baja

humedad relativa su factor limitante.

Dicha especie ha sido solamente detectada

por el autor de esta nota en Isla de Pascua y

obviamente en cítricos (naranja dulce). En cuanto

a la microfotografía presentada en IDESIA, ésta

corresponde a otro género de eriófido, una forma

vagante de Ditrymacus, recortada, ancha, y no

alargada y fusiforme como Phyllocoptruta, género

además caracterizado por un canal dorsal longi-

tudinal muy ancho. El especimen que se muestra

en la fotografía de Ditrymacus presenta un surco

dorsal muy angosto y además posee un

cefalotórax muy ancho.

En cuanto a la deformación de las hojas del

olivo, aparte de la fotografía señalada hemos

tenido la oportunidad de verlo en el valle de

Copiapó en árboles injertados. No existe ninguna

asociación entre el ácaro (Ditrymacus) y tal

síndrome.

Con esta nota se reitera la ausencia en Chile

Continental de la grave plaga de los cítricos

Phyllocoptruta oleivora (Ashm.), la cual en ningún

caso ataca olivos u otras especies frutales.

Debo además indicar que en la citada

publicación los autores involucran mi nombre

como identificador de Ph. oleivora en olivos.

Conozco muy bien esta especie y habría sido

sorprendente todavía haberla recogido en olivos.

En atención a que este desmentido no se hizo

oportunamente en la Revista IDESIA, me hago

un deber en rectificar esta situación lo cual puede

provocar serios perjuicios a nuestra fruticultura

de exportación, especialmente porque Chile es el

único país libre de Ph. oleivora en toda la región

Neotropical.

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Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 95-105.

CUARENTENA VEGETAL Y PRINCIPALES INSECTOS CAUSALES DE RECHAZO EN

PRODUCTOS FRESCOS PARA EXPORTACION, CHILE 1990 - 1991

ELIZABETH Arias T.!

RESUMEN

Se analizan los rechazos producidos en las exportaciones chilenas (1990-1991) de uva de mesa,

manzanas, peras, ciruelas, nectarinos, duraznos, kiwis, paltas, frambuesas y espárragos. La mayoría

de los rechazos (cerca del 60%) se debieron a la presencia de diversas especies de Homoptera.

Los embarques en general son rechazados, debido a la presencia de dos tipos de insectos: 1.

Insectos plagas asociados con el cultivo. 2. Insectos que contaminan el producto durante el proceso

de embalaje. Estos últimos infestan los embarques, ya sea por ser fototrópicos o por encontrarse

habitualmente en las cercanías de los lugares, en que se efectúan las labores de embalaje y

despacho.

La detección de 'insectos vivos puede causar una pérdida económica significativa, por la

posibilidad cierta de rechazo de embarques completos, debido a regulaciones cuarentenarias. En

orden a minimizar el riesgo de rechazo, la estrategia de manejo de plagas debiera incluir controles

pre y post-cosecha, cubriendo así todo el proceso de exportación; estas medidas proporcionarían

la máxima seguridad.

ABSTRACT

Chilean quarantine rejects for the September 1990 to August 1991 season are analyzed for table

grapes, apples, pears, plums, nectarines, peaches, kiwis, avocados, raspberry, and asparagus. Most

(60%) of the rejections were due to the presence of Homoptera. Shipments were rejected because

two differents insects: 1. Pest insects associated with the crops. 2. Insects that contaminated

shipments during the packing process. These latter insects are either phototropic of live near the

packing building and infest the pallets during packing and shipments operations.

The detection of pests causes a significant economic loss because the rejection possibility

of entire shipments due to quarantine regulations. In order to minimize the risk of rejection, the

pest management strategy should include pre and post harvest inspections, in order to cover the

entire exportation process. This integral strategy would provide maximun sanitary assurances for

the expert markets.

INTRODUCCION

El proceso cuarentenario se originó como una

medida de protección de la salud humana. La

práctica se inició en Venecia, en el siglo XIV y se

refería al período de detención para aquellos

barcos que venían de países con enfermedades

epidémicas. Históricamente la palabra “cuaren-

lFacultad de Recursos Naturales, Universidad de Talca,

Casilla 721, Talca - Chile. Dirección actual: R.M. Bohart

Museum, Department of Entomology, University of Califor-

nia, Davis, CA 95616.

(Recibido: 4 de agosto de 1992. Aceptado: 7 de enero

de 1993).

tena” deriva del latín quadraginata, del italiano

quaronta que significa “cuarenta” y de la palabra

quarantina que significa “cuarentena”. Las

primeras leyes dirigidas a suprimir pestes datan

de finales de 1660 en Francia y posteriormente se

observó la gran necesidad de promulgar legisla-

ciones para asegurar protección en contra de

ciertas plagas y enfermedades.

En 1952 se firma la Convención Internacional

de Protección Fitosanitaria, donde los gobiernos

signatarios reconocieron la utilidad de la

cooperación internacional para combatir las pla-

gas y enfermedades de plantas y productos vege-

tales, y para prevenir su introducción y difusión a

96 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

través de las fronteras nacionales. En esta

Convención, se destacó en el artículo 1, que con

el propósito de efectuar eficaz y conjuntamente,

y prevenir la introducción de plagas y enferme-

dades de plantas y productos vegetales, además de

promover las medidas para combatirlas, los gobi-

ernos contratantes se comprometen a adoptar

medidas legislativas, técnicas y administrativas de

protección fitosanitaria tanto para la importación

como para la exportación de productos vegetales.

Protección Vegetal

El término protección vegetal contempla los

programas de control de plagas que afectan los

procesos productivos agrícolas. Se refiere

además, a “cuarentena doméstica”, es decir:

detección, erradicación, contaminación y/o

supresión de pestes invertebradas patógenas y

malezas nocivas. En algunos países se consideran

además los pájaros, ratones, murciélagos y

conejos. En un sentido extricto, la protección

vegetal se refiere a las pestes recientemente intro-

ducidas de importancia cuarentenaria, e implica

el control de actividades ante aquellos organismos

que son indígenas o que han sido introducidos en

el pasado (i.e. domésticas) tratándose de casos

bien establecidos y localizados. Según lo

anterior,el término contempla la protección fito-

sanitaria dentro de los límites de un país.

Cuarentena Vegetal

La cuarentena, como concepto, es propia de cada

nación. Cada país tiene su propia diversidad de

fauna, así como de plagas y enfermedades. Se

refiere además a cuarentena no nativa, extranjera

y es usada como una estrategia de control para

aquellas plagas exóticas y patógenas y se aplica

tanto para artículos exportados como importados.

Para importados, los países pueden usar acciones

reguladoras de protección y así excluir pestes y

patógenos que puedan infestar e infectar, o con-

taminar, artículos de importación. Para los expor-

tados, se pueden usar procedimientos exclusio-

nistas para proteger la agricultura del país impor-

tador, de acuerdo con las regulaciones o condi-

ciones específicas para la importación. Siendo de

tal importancia, la cuarentena vegetal es y debiera

ser usada como una técnica de protección fito-

sanitaria de la economía de las naciones. En los

límites de los diferentes países, este proceso tras-

ciende las economías nacionales y puede tener

impactos internacionales.

DATOS ESTADISTICOS Y RESULTADOS

Agentes cuarentanarios en productos frescos

La inspección de una partida de productos al

estado fresco se realiza por muestreos de una

cantidad representativa del volumen a exportar. Si

se encuentra un organismo de importancia cuar-

entenaria, toda la partida es rechazada, pasando

este organismo a constituirse en una gente causal

de rechazo cuarentenario. Según la definición:

plaga cuarentenaria es aquella peste de impor-

tancia económica potencial, que no está presente

en el país importador o si lo está, no se encuentra

ampliamente distribuida: y es activamente

controlada. Es por tanto de vital importancia la

clasificación fidedigna de los insectos intercepta-

dos en estos productos. Algunas veces, insectos

benéficos han ocasionado rechazos de importan-

tes partidas de fruta. Cada año, las listas que

contienen todos los agentes cuarentenarios, son

publicadas a nivel internacional, para cono-

cimiento de todos los países. Cabe considerar que

si en una inspección no se posee información

referente al organismo encontrado, y de acuerdo

al riesgo involucrado en esta entrada se adopta la

medida de seguridad de no permitir el ingreso del

producto.

Rechazos Cuarentenarios por Productos (Sep-

tiembre 1990 - Agosto 1991)

A continuación se analizan los productos de

exportación de mayor importancia nacional,

destacándose en los gráficos correspondientes, las

causales de rechazo cuarentenario que se han

presentado en la temporada agrícola Septiembre

1990 a Agosto 1991. En algunos productos, tuvi-

eron lugar una gran cantidad de causales de

rechazo cuarentenario, por ello las causales se

agruparon en Ordenes de la Clase Insecta,

notándose en paréntesis la palabra -varios- que

indica más de un agente para ese grupo de insec-

tos. Los gráficos indican el producto, sus causan-

tes de rechazo, el porcentaje de participación -de

la causal cuarentenaria- obtenido del total de

cajas rechazadas del producto propiamente du-

rante la temporada de Septiembre de 1990 a

Agosto de 1991. Los porcentajes entregados en el

Arias: Rechazos cuarentenarios 1990-1991 97

análisis de cada producto, corresponde a valores

enteros, de forma tal que cifras decimales mayo-

res O iguales a 0,5 han sido aproximadas a la

unidad superior.

UVA DE MESA

Uva de mesa

Este producto que representa el mayor volumen

-60.125.786 cajas- en las exportaciones

hortofrutícolas, tiene una gran varlalidad en

cuanto a causales de rechazo cuarentenario. Los

datos estadísticos presentados en este trabajo se

encuentran en la figura 1.

En años anteriores el “burrito de la vid” Naupac-

tus xanthographus (Germar) (Coleoptera: Curcu-

lionidae), tuvo gran incidencia junto a la “chinche

parda de los frutales” Leptoglossus chilensis Spi-

nola (Hemiptera: Coreidae). En la actualidad el

“burrito de la vid” fue detectado en un 23% y

Porotermes quadricollis (Rambur) (Isoptera:

Termopsidae) en un 22%, especie esta última que

no se halla asociada al cultivo. Los “chanchitos

blancos” (Pseudococcidae), plaga característica

de la uva, tienen una participación del 29%.

Actualmente existe un convenio cooperativo

entre la Asociación de Exportadores de Chile y el -

Departamento de Agricultura de EE.UU., en que

la uva de mesa, con destino al mercado de ese

país, es sometida al proceso de fumigación con

bromuro de metilo, evitando la presencia de

plagas vivas.

Agentes Cuarentenarios

P. quadricollis

Pseudococcus

Otros

S, oleae

Parthenolecanium

N. xanthographus

Total Cajas Rechazadas: 79.288

Cajas Rechazadas/Exportadas: < 1%

Manzanas

Es producto alcanzó 21.413.321 cajas exportadas

durante la temporada que se analiza, con 1% de

cajas rechazadas. La causal de mayor importancia

fue Quadraspidiotus perniciosus (Comstock)

(Diaspididae), “escama de San José”, a la cual se

debe el 34% de dichos rechazos. Los datos

estadísticos se encuentran en la figura 2; entre la

causal Lepidoptera, se encuentra Cydia po-

monella (L.) (Tortricidae), “polilla de la man-

zana”, con una contribución de 6% al total de

rechazos.

El género Blapstinus (Coleoptera: Tenebri-

onidac) es responsable del 6% de los rechazos, en

especial B. punctulatus Solier o “teatino”, aún

cuando en la literatura nacional no se le señala

como plaga agrícola. Esta especie es detectada

además en varios otros productos, ya que acos-

tumbra a esconderse entre los “pallets” de frutas

o entre las cajas embaladas, en las plantas embala-

doras o en sus cercanías, pudiendo fácilmente

infestar los embalajes.

98 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

MANZANAS

Agentes Cuarentenarios

Gryllidae

Pentatomidae

Pseudoccocus

E. lanigerum

L ulmi

Q. perniciosus

Lepidoptera (v)

Coleoptera (v)

Total Cajas Rechazadas: 278.586

Cajas Rechazadas/Exportadas: 1%

Peras un 20%. Hubo además rechazos por “chanchitos

blancos”, principalmente Pseudococcus affinis

De las 6.984.460 cajas exportadas, se rechazó un (Maskell) con un 15% de participación; Micro-

3%. Este producto tuvo 35 agentes cuarentenarios gryllus pallipes (Philippi) fue detectado en 8 oca-

detectados; la figura 3 muestra los datos siones y contribuyó con un 6% de los rechazos (en

estadísticos y se observa que, al igual que en el gráfico como Gryllidae).

manzanas, O. perniciosus tuvo gran incidencia con

rentenari

Isoptera

Gryllidae

Heteroptera (v)

Homoptera (0)

Q. perniciosus

Pseudococcus

Lepidoptera (v)

Ena D0Sana

Coleoptera (v)

Total Cajas Rechazadas: 238.430

Cajas Rechazadas/Exportadas: 3%

Ciruelas causales de rechazo; entre los Diaspididae O.

perniciosus es la causal de mayor importancia, con

En la temporada se exportaron 6.493.571 cajas y 58 detecciones de un total de 110, y por sí sola

se rechazó un 7%. En la figura 4 se observa las contribuye con un 39% al total de rechazos. Por

Arias: Rechazos cuarentenarios 1990-1991 99

otra parte los “chanchitos blancos” (Pseudococ-

cidae) fueron la causa de un 16% de los rechazos,

siendo detectados en 12 ocasiones; Grapholita

molesta (Busck), “polilla oriental de la fruta”, fue

detectada en 8 ocasiones.

CIRUELAS

Nectarines

Las exportaciones de nectarines fueron 5.258.247

cajas y los datos estadísticos se muestran en la

figura 5. O. perniciosus es nuevamente la especie

con mayor incidencia en los rechazos (49%) y con

rentenari

Isoptera

Nysius

Diaspididae

Pseudococcus

Lepidoptera

C. molesta

Coleoptera

Total Cajas Rechazadas: 441.566

Cajas Rechazadas/Exportadas: 7%

28 detecciones de un total de 65. Grapholita

molesta tuvo una participación del 25%; “chanchi-

tos blancos” del género Pseudococcus, fueron

interceptados en 4 ocasiones, ocasionando re-

chazos por un valor inferior al 2%.

49 %

NECTARINES

Agentes cuarentenarios

MI Isoptera

Hongos

Diaspididae

Q. perniciosus

Cicadellidae

Pseudococcus

Lepidoptera

G. molesta

Tortricidae

Coleoptera (v)

M.pallipes

Total Cajas Rechazadas: 337.766

Cajas Rechazadas/Exportadas: 6%

100 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Duraznos causante de un 53% de los rechazos, siendo detec-

tada en 10 ocasiones de un total de 33;

Este producto alcanzó 4.571.207 cajas exportadas, Pseudococcus contribuyó con un 6% de los re-

de las cuales se rechazó el 2%. En la figura 6 se chazos.

observa que G. molesta fue el principal agente

DURAZNOS

Agentes Cuarentenarios

Nysius

P. quadricollis

Pseudococcus

OEA E

Q. perniciosus

Lepidoptera

G. molesta

Curculionidae

8 M0 80

Lyctidae

Total Cajas Rechazadas: 94.034

Cajas Rechazadas/Exportadas: 2%

Kiwis chazo se muestran en la figura 7; se puede obser-

var que Diaspididae contribuye con el mayor

El volumen exportado fue de 11.607.711 cajas, con porcentaje, 67% de los rechazos, y dentro de esta

un 4% rechazadas. Los agentes causales de re- familia se puede mencionar a Hemiberlesia rapax

Agentes Cuarentenarios

Orthoptera (v)

Frankliniella

Heteroptera (v)

Diaspididae

Lepidoptera

Coleoptera (v)

Total Cajas Rechazadas: 408.585

Cajas Rechazadas/Exportadas: 4%

Arias: Rechazos cuarentenarios 1990-1991 101

(Comstock), de distribución cosmopolita, especie

la cual fue detectada en 21 oportunidades y oca-

sionó el 39% de los rechazos. Entre los Coleop-

tera, adultos de Blapstinus fueron detectados en

9 ocasiones, del total de 40 para este producto;

otro diaspídido detectado fue Aspidiotus nerti

Bouché.

PALTAS

Paltas

En este producto hubo un 4% de rechazos y

10.607.711 cajas exportadas. Las causales de re-

chazo se muestran en la figura 8; se observa que

Lepidoptera contribuye con el 65% de los re-

chazos. Dentro de Noctuidae, Copitarsia es el

causante de un 27% de los rechazos; los represen-

rentenari

M. pallipes

Lepidoptera

Noctuidae

Coleoptera (v)

DON ANA

A. neril

Total Cajas Rechazadas: 39.845

Cajas Rechazadas/Exportadas: 4%

tantes de este género se encuentran asociados a

espárragos, alfalfa y alcachofa, entre otros veg-

etales. El Scarabaeidae Ligyrus villosus (Burmeis-

ter) sólo fue detectado en dos ocasiones, esta

especie había presentado diversas frecuencias de

detección en años anteriores; con seguridad in-

festa los productos en proceso de exportación, al

ser atraído por las luces de las plantas de em-

balaje.

FRAMBUESAS

Agentes Cuarentenarios

Otros

Thysanoptera

Heteroptera

Homoptera

Lepidoptera

BAONESA

Coleoptera (v)

Total Cajas Rechazadas: 55.230

Cajas Rechazadas/Exportadas: 4%

102 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Frambuesas

Este producto presentó 51 causales de rechazo,

siendo representantes del género Frankliniella

responsables de un 33% de los rechazos; estos

frecuentan las flores de diversas malezas que se

encuentran en los límites de los cultivos,

infestándolos desde ahí. Coleoptera contribuyó

con un 20% (figura 9) generado por 13 agentes;

entre estos B. punctulatus y Conoderus rufangulus

(Elateridae) causaron rechazos de un 2% y 3%

respectivamente. Se presentaron además varios

Noctuidae, destacándose el género Agrotis con un

1%.

ESPARRAGOS

Espárragos

La exportación alcanzó las 673.431 cajas durante

la temporada; los rechazos cuarentenarios alcan-

zaron (ver figura 10) a 63.456 cajas, correspon-

diente a un 9%. Los principales agentes causantes

de los rechazos son Noctuidae en especial estados

larvales de Copitarsia, y Coleophoridae

(Coleophora); en este último caso se presentaron

fundamentalmente a inicios de la temporada

(septiembre y octubre), especies de este género

son señaladas como plagas de árboles forestales

en EE.UU. de América. Entre las especies de

Coleoptera detectadas se puede mencionar a C.

rufangulus (Gyllenhal) y B. punctulatus; en el

primer caso es posible que debido a su fototro-

pismo, pueda infestar los productos al ser atraído

por las luces de las plantas procesadoras; respecto

de la segunda especies, ha sido observada en

terreno, cerca de la base de las brácteas en plan-

taciones comerciales, no observándose daño al

cultivo (antecedentes no publicados).

Thrips tabaci

El griseus

Miridae

Lepidoptera

Noctuidae

Coleophoridae

Coleoptera (v)

Total Cajas Rechazadas: 63.456

Cajas Rechazadas/Exportadas: 9%

DISCUSION

Incidencia de Ordenes de Insecta

Es el Orden Hemiptera (excluyendo Heterop-

tera) el principal causante de rechazos, con cifras

cercanas al 60% en la mayoría de los productos

analizados; dentro de estos insectos, la “escama

de San José”, (O. perniciosus) es responsable por

sí sola del 29% del total de rechazos. Este grupo

participa con un 83% de los rechazos en ciruelas,

67% en kiwis y 72% en manzanas.

Lepidoptera contribuye con un 19% del total

rechazado; entre los agentes principales cabe

destacar a G. molesta, la cual es importante causal

de rechazos en nectarines.

Coleoptera aporta un 11% de los rechazos;

en kiwis es causante del 3% rechazado y en peras

de un 2%.

Representantes de Thysanoptera sólo se

detectaron en espárragos, frambuesas y paltas;

ejemplares de Isoptera fueron interceptados en la

Arias: Rechazos cuarentenarios 1990-1991

103

mayoría de los productos, pero son responsables

de rechazos en una baja proporción.

Frecuencia de detección (fd)

Una forma de poder apreciar en conjunto las

diferentes causales de rechazo, es observar la

frecuencia de detección de un agente cuarente-

nario (ver figura 11). Este índice se refiere a las

veces que su detección en inspección, resultó en

un rechazo cuarentenario; un organismo que es

responsable del rechazo de un determinado vo-

lumen de un producto, pero con una mayor fre-

cuencia, debe asignársele mayor importancia. Un

agente con un alto índice o frecuencia de

detección (fd), debe ser un factor determinante en

la estrategia fitosanitaria que debe desarrollarse

y aplicarse, para disminuir la posibilidad de re-

chazos y mejorar la calidad fitosanitaria de los

productos de exportación. La determinación y

cuantificación de estos índices, debiera ser un

Figura 11,

Frecuencia de Intercepción en Inspección Cuarentenaria

Cantidad

objetivo a corto plazo para documentar y decidir

prioridades, en el desarrollo de las técnicas fito-

sanitarias en cuarentena vegetal.

Los agentes cuarentenarios más relevantes

en el período analizado, incluyendo su frecuencia

de detección, son:

- — Quadraspidiotus perniciosus, responsable del

29% del total rechazado y con fd = 116.

- Hemiberlesia rapax, causante de un 8% de

rechazos y fd = 3.

- — Grapholita molesta, causante del 7% re-

chazado y fd = 33.

- Pseudococcus, responsables del 6% del total

rechazado y fd = 26.

- — Blapstinus con td = 16.

- — Microgryvllus pallipes con fd = 14.

- — Conoderus rugangulus con fd = 19.

- — Copitarsia con fd = 39.

- — Frankliniella con fd = 39.

Ciruelas

Nectarines

Ordenes interceptados

E Isoptera

O Collembola

Ml Thysanoptera

Ml Orthoptera

E] Heteroptera

Homoptera

E Lepidoptera

IM] Coleoptera

Hymenoptera

Duraznos

Frambuesas

104 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Importancia e impacto económico

Los cultivos poseen una diversidad particular de

insectos incluyendo aquellos que los afectan y que

son considerados como plagas y otros que no

afectan los cultivos, pero que se encuentran en

ellos de manera accidental. Este último grupo de

insectos en general no debieran ser considerados

como plagas, ya que algunos utilizan el cultivo

comorefugio, otros son agentes polinizantes o son

simplemente visitantes esporádicos, y otros

pueden llegar a localizarse en los productos,

debido a su actividad nocturna y fototropismo.

Lo anteriormente expuesto se estima de

interés para considerar una nueva estrategia, en

relación a las técnicas cuarentenarias; se consid-

era de importancia el establecer concluyente-

mente el papel del insecto y su relación fitosani-

taria con los productos de exportación. Conjun-

tamente con lo anterior, se debieran desarrollar

técnicas para el control de los distintos a gentes

cuarentenarios, en los distintos ambientes en que

ellos se encuentran; esto último con el fin de

minimizar el riesgo de rechazos cuarentenarios y

reducir el impacto económico.

El total de productos frescos rechazados,

alcanza una cifra cercana a los 2 millones de cajas,

con un valor del orden de 15 a 20 millones de

dólares. Las pérdidas debidas a estos rechazos, sin

duda pueden disminuirse desarrollando pro-

gramas de investigación, mejorando las técnicas

fitosanitarias, orientados a disminuir la inciden-

cia, infestación o presencia de insectos cuarente-

narios. Se considera necesario destacar estos

aspectos, en atención a que en la actualidad otros

mercados pueden ofrecer en el corto plazo pro-

ductos frescos, transformándose en una compe-

tencia económica para nuestro país.

CONCLUSIONES

Las diferentes causales de rechazo cuarentenario,

obedecen a plagas que se hallan asociadas direc-

tamente con los cultivos o insectos que ocasional-

mente infestan estos productos no teniendo una

relación insecto/huésped establecida.

Una forma de evitar la incidencia de causales

de rechazo, además de los programas fitosanita-

rios propios del cultivo, es el desarrollar nuevos

programas y estrategias que permitan disminuir la

incidencia de insectos accidentales que por difer-

entes razones, infestan los productos durante el

proceso de embalaje o en vías de exportación.

La cuarentena vegetal no debiera significar

barreras o impedimentos en las exportaciones de

productos hortofrutícolas, es y debe ser usada

como una técnica para proteger la agricultura de

los países compradores, como también la propia

agricultura nacional.

AGRADECIMIENTOS

Al Dr. Manuel Lagunas-Solar (Universidad de

California, Davis), por la revisión crítica del

manuscrito; al Dr. Steve Heydon (Museo Bohart,

Universidad de California), por sus valiosas suge-

rencias. A la Asociación de Exportadores de Chile

A.G., en especial a la Ing. Agr. Jimena López A.,

por la información facilitada y al Sr. Claudio

Vega, de la unidad de computación de esa

institución, por la ayuda prestada. Finalmente al

Dr. Jorge N. Artigas (Departamento de Zoología,

Universidad de Concepción), por impulsarme en

esta labor.

LITERATURA CONSULTADA

ANÓNIMO. 1951. Food and Agriculture Organization of

the United Nations. FAO International Plant Pro-

tection Convention. 34 pp.

ANÓNIMO. 1973. Food and Agriculture Organization of

the United Nations. INDEX, Conference and

Council Decisions, 1945 - 1972. Rome.

ANÓNIMO. 1983. Plant Quarantine Guide. Appendix:

Food and Agricultura Organization of the United

Nations. 143 pp.

ANÓNIMO. 1991. Datos estadísticos del Departamento

de Computación. Asociación de Exportadores de

Chile, A.G. Santiago.

ARIas-ToBar, E. 1988. Exportación de uva de mesa,

principales requisitos fitosanitarios y rechazos.

Temporada 1983/84 - 1987/88. Antumapu, 2(2):

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COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS

KuscheL, G. 1990. Beetles in a suburban environment:

A New Zealand case study. The identity and status of

Coleoptera in the natural and modified habitats of

Lynfield, Auckland (1974 - 1989). DSTR Plant Protec-

tion Report N23, 120 pp., 230 figs. (ISBN 00477-02596

X). Precio US$ 29.95 (incluyendo costos de envío),

DSIR Library, Mt Albert Research Centre, Private

Bag, Auckland, New Zealand.

En una época de utilización intensiva del ambiente, en

que las decisiones se toman frecuentemente sin tener

en consideración los efectos de ellas en el entorno

natural, resultan de vital importancia aquellos estudios

orientados a conocer la diversidad biológica, conside-

rando muestreos sistemáticos y durante un largo

período de tiempo, efectuados en ambientes naturales.

Desde esta perspectiva, el trabajo realizado por el Dr.

Kuschel, con colectas y observaciones durante 15 años

en una pequeña área suburbana de Nueva Zelandia,

reviste enorme importancia y constituye un trabajo

pionero, considerando el enorme lapso de tiempo que

le ha llevado su ejecución.

El autor muestra su vasta experiencia, combi-

nando su conocimiento general de Coleoptera y su rica

experiencia de terreno, presentándonos en las 16

páginas iniciales una especie de introducción global, en

la cual entrega detalles acerca de métodos de colecta

utilizados, tipos de ambientes muestreados y su respec-

tiva fauna asociada de coleópteros, diversidad biótica

del área estudiada y posibilidades de adecuación de la

fauna nativa a las nuevas condiciones de ambientes

modificados. Las 16 páginas siguientes nos muestran,

en forma tabulada, los antecedentes reunidos, pro-

cedencia geográfica, capacidad de vuelo abundancia

BEECcHE C., Marcos; CERDA M., Luis; LERMANDA F.,

María ELENA; MoREnNO L., IncGriD Y VERGARA B., Car-

LOTA. 1993. Manual de Reconocimiento de Plagas

Forestales Cuarentenarias. 169 pp. 28 fichas color. ed.

Servicio Agrícola y Ganadero. Ministerio de Agricul-

tura, Chile, Santiago.

El importante desarrollo alcanzado por la actividad

forestal comercial debido en gran medida a las favo-

rables condiciones fitosanitarias que presentan las plan-

taciones forestales del país, como se señala en la

introducción de la publicación, obligan a una perma-

nente vigilancia de modo de impedir el ingreso al país

de agentes que rompan el equilibrio alcanzado. Las

autoridades del sector así también lo han comprendido,

financiando la edición de esta publicación bien infor-

mada y aún mejor ilustrada.

La información recopilada sobre 27 agentes

patógenos y presuntos enemigos de los recursos fores-

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 107-109.

relativa y tipo de hábitat en que se encuentran, respecto

de cerca de 1.000 especies de Coleoptera (65 familias)

encontradas en el área en estudio; más del 75% de las

especies registradas, resultan ser endémicas.

En la segunda parte presenta la lista de especies,

por familia de acuerdo auna ordenamiento sistemático;

para cada familia entrega una figura de una especie

representativa y para cada especie agrega comentarios,

fundamentalmente condiciones de los registros, y otros

datos de interés. A continuación viene una sección de

notas taxonómicas, en la cual da nuevas sinonimias,

combinaciones, revalidaciones y descripciones de

nuevos taxa. Por último acompaña un listado de refe-

rencias, a las cuales siguen 108 figuras excelentemente

logradas, correspondientes a igual número de especies,

presentadas en forma de láminas; en este set de figuras

se nota la falta de una escala de referencia, algo que

podría ser de utilidad para posibles aficionados inte-

resados en los coleópteros. Un apéndice sobre la

vegetación de la zona estudiada, por A.E. Esler, com-

plementa esta obra.

Los resultados presentados por el Dr. Kuschel, nos

muestran la importancia de mantener reservorios de

vegetación nativa, los cuales se constituyen en concen-

tradores de fauna; esto es algo que debe ser adecuada-

mente valorado, sobre todo si se considera que aún

cuando una fracción de la fauna nativa tiene la ca-

pacidad de persistir en áreas urbanas, más del 90% de

dicha fauna es incapaz de mantenerse en ambientes

modificados.

Mario ELGUETA

Museo Nacional de Historia Natural

tales nacionales se entrega en 8 puntos titulados:

Clasificación, huéspedes, distribución, identificación,

importancia económica, biología, vías de ingreso y

referencias. Además de las ilustraciones a todo color de

los agentes y/o su daño y de la ubicación en mapas de

las distribuciones geográficas a nivel mundial. Resulta

también muy interesante la solución dada a su

compaginación en forma de hojas intercambiables que

permite entre otras, adjuntar información respecto de

las plagas tratadas o de otros agentes que desee adi-

cionar.

Este manual de reconocimiento de plagas fores-

tales cuarentenarias ha sido ejecutado por un selecto

grupo de profesionales encabezados por el Ingeniero

Forestal Marcos Beeche activo y entusiasta socio de la

Sociedad Chilena de Entomología.

ARIEL CAMOUSSEIGH M.

Museo Nacional de Historia Natural

108 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Kimsey, L.S. $: R.M. BoharT. 1990. The chrysidid wasps

ofthe world. xii + 652 pp. Oxford University Press, New

York.

Tal como es señalado por los autores en la

Introducción, esta obra nos proporciona una visión

global de los Chrysididae a nivel mundial, además de

sentar las bases para la ejecución de estudios de revisión

en el grupo, al reunir toda la información publicada

sobre el tema.

Enlos breves capítulos 2 al 5, efectúan una revisión

histórica de la actividad de investigación en esta familia,

detallan aspectos de la presentación de las listas de

especies, entregan antecedentes biológicos conocidos y

analizan la distribución geográfica del grupo.

El capítulo 6 está orientado a clarificar la nomen-

clatura de caracteres morfológicos utilizados, in-

cluyendo un glosario de términos. En el capítulo 7 se

presenta una cladograma para los taxa supragenéricos

de esta familia, discutiéndose los caracteres utilizados;

Csiro (eds.). 1991. The insects of Australia. A textbook

for students and research workers. 2nd. ed. vol. 1, pp.

izxvii + 1-542, 8 pls.; vol. 2, pp. 543-1137. Cornell Uni-

versity Press, Ithaca. (124 Roberts Place, Ithaca, NY

14850, U.S.A.) US$ 236.50.

En un formato adecuado y con una excelente

impresión, ha salido a circulación esta monumental

obra en dos volúmenes, producto del trabajo integrado

de 71 especialistas de renombrado prestigio,

pertenecientes a las más diversas instituciones de di-

ferentes países. Esta obra viene a reemplazar aquella

homónima, editada en 1970, con reimpresiones en 1973

y 1979, y al Suplemento respectivo de 1974.

El título en sí podría resultar engañoso, al indicar

una cobertura geográfica reducida sin embargo se trata

de un aporte de innegable valor, de interés tanto para

investigadores como para estudiantes de todo el orbe,

al incluir en sus diversos capítulos el enorme incre-

mento reciente, en el conocimiento de los insectos.

Es conveniente destacar en su real dimensión, el

esfuerzo desplegado en sintetizar y hacer accesible el

enorme cúmulo de información generada en los últimos

decenios, que ha permitido un gran avance en la

comprensión de las relaciones existentes entre los

diversos grupos de Hexapoda. Teniendo en perspectiva

que el enfoque taxonómico es el fundamento necesario

para emprender cualquier otro tipo de estudios acerca

de estos organismos, es lógico esperar que esta obra se

constituya en una valiosa fuente de consulta y provea

de antecedentes respecto de la literatura relevante

dispersa. Sin duda el contar con aportes de esta natu-

raleza, estimulará el interés sobre el grupo, servirá a la

docencia y, en variados aspectos, facilitará la

asimismo se incluye una clave para el reconocimiento

de subfamilias y tribus.

Los capítulos 8 al 11 constituyen el grueso de este

aporte y están dedicados a cada una de las cuatro

subfamilias consideradas como válidas; el tratamiento

incluye caracterización de taxa supraespecíficos, clave

para géneros, hospederos conocidos y distribución

geográfica de cada género, claves para grupos de

especies y caracterización de ellos, catálogo de especies

de cada género, sinonimias, distribución geográfica de

las especies e instituciones depositarias del material

tipo. Se presentan además cladogramas para géneros de

Amiseginae, Elampini y Chrysidini.

La última parte de esta valiosa obra comprende

una extensa bibliografía, un completo índice de

nombres genéricos y específicos y otro de hospederos

conocidos.

Mario ELGUETA D.

investigación.

En breves páginas iniciales (14) se entrega el lis-

tado de autores, Comité Editorial, incluyéndose una

presentación, agradecimientos, contenido, detalle de

láminas a color e introducción. A continuación de estos

aspectos formales, se desarrollan los 42 capítulos en que

se divide la obra.

El Capítulo 1 trata en 30 páginas la anatomía del

exoesqueleto e incluye una clave para el recono-

cimiento de las Ordenes de Hexapoda, tanto a nivel de

adultos como de estados inmaduros; se integran aquí

algunos otros artrópodos, factibles de ser confundidos

con insectos. Es de destacar el esfuerzo hecho en inten-

tar establecer una terminología uniforme, para los

caracteres morfológicos considerados.

El Capítulo 2 se refiere en forma sintética (35

páginas) a anatomía de los principales órganos y partes

del cuerpo de los insectos, describiendo sus funciones.

Los aspectos biológicos generales, son tratados en las

41 páginas del Capítulo 3, examinándose las respuestas

de los organismos a condiciones ambientales, rela-

ciones insectos - plantas, predación, parasitismo,

fenómeno de migraciones y diversos otros tópicos de

interés.

Los principios y prácticas de la Sistemática, con

una breve exposición de las corrientes actuales, se

detallan en el Capítulo 4 (16 pp.). El Capítulo 5, enigual

número de páginas, trata la filogenia de Hexapoda; los

diversos agrupamientos son analizados de acuerdo a un

arreglo filogenético, indicándose los problemas aún no

resueltos.

El Capítulo 6 (39 pp.), se refiere al registro fósil

y la evolución de estructuras en Hexapoda. Al igual que

en el capítulo anterior, se propone una filogenia de la

Comentarios bibliográficos 109

categorías superiores, en este caso basado en el análisis

de fósiles y venación de alas; con alguna variación,

existe en general una correspondencia entre esas pro-

posiciones.

En los siguientes cuatro capítulos, se tratan se-

cuencialmente los temas relacionados con:

Biogeografía (18 pp.), análisis histórico de la actividad

entomológica en Australia (23 pp.), los insectos y el

hombre en relación a ese país (15 pp.) y finalmente los

insectos australianos respecto de la investigación

científica (16 pp.).

Del Capítulo 11 al 42, se tratan separadamente los

Ordenes actuales de Hexapoda, comenzando por

Collembola, Protura y Diplura, grupos estos considera-

dosen Clases distintas a Insecta. El tratamiento de estas

categorías, abarca 291 páginas del volumen 1 (Collem-

bola a Neuroptera) y 458 páginas del volumen 2

(Coleoptera a Hymenoptera); cada capítulo incluye

consideraciones generales, aspectos morfológicos,

biológicos, desarrollo, clasificación y claves (superfa-

milias, familias, según corresponda), además de la

caracterización de familias y sin dejar de señalar para

cada una de ellas, sus respectivas ejemplificaciones.

El volumen se completa con 73 páginas de refer-

encias, donde se reunen sobre 3.800 citas bibliográficas,

en su mayoría recientes y de gran interés general. Se

finaliza con un completo índice de 63 páginas, que

facilita en gran medida la consulta.

A través del texto se distribuyen 730 figuras, las

cuales en realidad corresponden a cerca de 2.500 ilus-

traciones de gran calidad (158 a color), mayoritaria-

mente de caracteres morfológicos, adultos e inclusive

estadios juveniles de los grupos considerados.

En resumen es esta una obra de interés general,

que trasciende el ámbito geográfico para la cual fue

creada y de enorme utilidad en la actualización de

conocimientos generales. La excelente calidad de la

impresión, de las ilustraciones y sus muy buenas diag-

nosis, como asimismo sus claves, además de las deta-

lladas informaciones taxonómicas y biológicas, nos

hacen considerar su precio como razonable.

Mario ELGUErA D.

Museo Nacional de Historia Natural

110 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

NOTICIAS

XV CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLO-

GIA, Sociedad Chilena de Entomología - Univer-

sidad Austral de Chile. 11 al 13 de Noviembre de

1993, Valdivia.

Durante el desarrollo de este Congreso, que tendrá una

vez más como sede a la Universidad Austral, se

efectuarán dos symposio: uno referido a Conducta

Animal y el otro sobre Control Biológico de Plagas

Forestales. La Comisión Organizadora está presidida

por la consocia Prof. Dolly Lanfranco. Informaciones:

FAX (56) (063) 212953.

TALLER INTERNACIONAL; EL CUATERNARIO

DE CHILE. 5? reunión anual del proyecto PIGG

- 281 “Climas cuaternarios de América del Sur”.

1 - 9 de Noviembre de 1993, Santiago.

Como objetivo de esta reunión, se destaca el promover

la interacción entre investigadores interesados en

problemas del Cuaternario de Chile y de Sudamérica,

en disciplinas tales como: Geología, Arqueología,

Dendrocronología, Geomorfología, Palinología,

Climatología y Biografía. El programa incluye confer-

encias, paneles y excursiones. Informaciones: Sr. Juan

C. Aravena, Departamento de Biología, Facultad de

Ciencias, Universidad de Chile, Casilla 653, Santiago -

Chile; FAX (56)(2) 271 2983.

INTERNATIONAL SYMPOSIUM: BIODIVER-

SITY AND SYSTEMATICS IN TROPICAL

ECOSYSTEMS. May 2 - 8, 1994. Bonn.

Este simposio está orientado a los aspectos zoológicos

de ecosistemas terrestres; en adición a la tradicional

participación de especialistas en vertebrados, se consid-

era la inclusión de Arthropoda Tropical como un nuevo

tema de presentaciones. Informaciones: Dr. Franz

Krapp, Zoologisches Forschungsinstitut und Muscum.

A. Koenig, Adenaueralle 150-164, 53300 Bonn 1, Ger-

many; FAX (02) (28) 216979.

XIII CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLO

GIA.

En el Campus del Barrio Universitario de la Universi-

dad de Concepción, los días 26 al 29 de Noviembre de

1991, se llevó a efecto el XIII Congreso Nacional de

Entomología, el cual contó con la participación de 86

utores que provenían de 13 instituciones nacionales,

«demás de 4 extranjeras: Japón (Shimane University

Matsue), Argentina (Neuquén y Tucumán) y USA

(Ohio State University). Fueron presentados 62 tra-

bajos originales. Se realizaron tres simposios: a)

Artrópodos de importancia Médico-Veterinaria; b)

Entomología Cuarentenaria y c) Artrópodos versus

Medio Ambiente.

XIV CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLO-

GIA

Los días 11 al 13 de Noviembre de 1992, se desarrolló

en el Museo Nacional de Historia Natural el XIV

Congreso Nacional de Entomología. En esta opor-

tunidad, más de 80 asistentes tuvieron la ocasión de

departir y escuchar 45 ponencias de investigaciones

originales, producto del trabajo especializado de inves-

tigadores pertenecientes a 12 instituciones nacionales

y Sextranjeras; cabe destacar la participación numerosa

de colegas argentinos.

Actividades especiales dentro del Congreso fueron

una conferencia sobre Psylloidea, dictada por el espe-

cialista mundial Dr. Daniel Burckhardt (Muséum

d'Histoire Naturelle, Ginebra - Suiza) y la mesa re-

donda sobre la formación entomológica en la

enseñanza superior.

OBITUARIO

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 111-114

JOSE VALENTIN HERRERA GONZALEZ

(1913 - 1992)

José Herrera nació en Mejillones (2? Región), el

9 de octubre de 1913, de padres españoles. Fue el

mayor de cinco hermanos. Falleció en Santiago el

29 de enero de 1992, a los setenta y ocho años de

edad.

Realiza sus estudios secundarios en el Cole-

gio San Luis de Antofagasta. Ingresa a la Univer-

sidad de Chile a estudiar pedagogía en biología y

química (1931-1934) y educación física (1935-

1937). En 1939 se recibe de profesor en ambas

carreras con la memoria titulada "La pesca en

Mejillones”, tema tratado tanto desde el punto de

vista biológico como deportivo.

Inicia su carrera docente en 1939 como pro-

fesor de biología en el Instituto Nacional. Desde

1940 y hasta 1945 es profesor de biología,

educación física y química en el Liceo de

Hombres y en la Escuela Industrial de Punta

Arenas. Desde 1946 y hasta 1957 se desempeña

como profesor de biología en los siguientes esta-

blecimientos educacionales de Santiago: Liceo de

Aplicación, Instituto Nacional, Manuel de Salas y

Grange School. Además, desde 1960 y hasta

noviembre de 1963, es Superintendente de

Educación.

En 1946 gana por concurso de antecedentes

y Oposición tres horas de zoología en el depar-

tamento de biología de la Facultad de Filosofía y

Educación de la Universidad de Chile. Desde esa

fecha y hasta princi-pios de 1981 desempeña

diversas actividades docentes, administrativas y

de investigación. Fue jefe del departamento de

biología y Secretario de Facultad (1957-1960).

Dirigió el Centro de Estudios Entomológicos de

la Universidad de Chile desde su creación, en

1960, hasta noviembre de 1963, año que jubila en

este cargo y en el de Superintendente de

Educación. En 1964 fue elegido Profesor Extraor-

dinario por la Facultad de Filosofía y Educación

de la Universidad de Chile.

A principios de 1981 se inicia una

reestructuración de la educación superior, hecho

por el cual la Facultad de Filosofía y Educación

de la Universidad de Chile se divide en dos,

quedando una dentro de la administración de la

Universidad de Chile, y la otra pasa a constituir

la Academia Superior de Ciencias Pedagógicas de

Santiago, la que, a partir de agosto de 1985,

constituye la Universidad Metropolitana de Cien-

cias de la Educación. José Herrera pasa a formar

parte del personal académico de estas dos últimas

instituciones. En ellas, desempeña cargos de

Director de Departamento de Biología y Decano

de la Facultad de Ciencias Básicas (1986-1988).

En 1983 se crea en la Academia Superior de

Ciencias Pedagógicas el Centro de Entomología

y, al constituirse la Universidad Metropolitana,

pasa a denominarse Instituto de Entomología.

José Herrera, en ambas instituciones desempeñó

el cargo de Director (1983-1986). al dejar de la

Decanatura en 1988, regresa al Instituto, a sus

actividades de investigación, hasta diciembre de

1991. La Universidad Metropolitana lo distingue,

proponiéndolo al Premio Nacional de Educación

en 1985, el cual le fue otorgado. En 1988 lo

nombra Profesor Emérito y en 1989 lo premia por

“52 años de actividad docente...”.

Perteneció José Herrera a diversas so-

ciedades nacionales y extranjeras, en las que

desempeñó cargos directivos: Sociedad Nacional

de Profesores, Colegio de Profesores, Centro de

Profesores de Biología y Química “Federico

Johow”, Academia Chilena de Ciencias Natu-

rales, Sociedad Chilena de Entomología, National

Science Teachers Association (USA), National

Association of Biology Teachers (USA), Lepi-

dopterists, Society (USA), y Entomological Soci-

ety of Washington (USA).

En la sesión del 11 de abril de 1934 de la

Sociedad Chilena de Entomología, fue propuesto

como socio por el Secretario señor Alberto Fraga

y en la del 12 de abril de 1939, fue elegido Secre-

tario-Tesorero. Desde esa época, ha desem-

peñado diversos cargos en la Directiva y en el

Comité editor de la revista de la institución, y ha

participado en las Reuniones y Congresos organi-

zados por la Sociedad. También fue distinguido

como su Socio Honorario en 1985.

Desde 1948 viajó a lo largo y ancho del país,

colectando material entomológico, especialmente

ropalóceros, para formar e incrementar -sucesiva-

mente- las colecciones de la Universidad de Chile,

de la Academia de Ciencias Pedagógicas y de la

Universidad Metropolitana de Ciencias de la

112 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Educación. Además visitó los países sudameri-

canos para completar sus estudios de mariposas

andinas.

Entre 1951 y 1963 viaja -en varias opor-

tunidades- al extranjero, comisionado por el

Ministerio de Educación. Logra entonces contac-

tarse con los investigadores y revisa el material

chileno depositado en los grandes museos de

Washington, Chicago, California, New York y

Londres.

En 1971 viaja a Cuzco (Perú), comisionado

por la Universidad de Chile, para participar en el

Primer Congreso Latinoamericano de

Entomología; y en 1981, participa en el Cuarto

Congreso Latinoamericano de Entomología re-

alizado een Maracay (Venezuela), en

representación de la Academia Superior de Cien-

cias Pedagógicas.

LISTADO DE TRABAJOS PUBLICADOS

POR JOSE HERRERA (1949-1992)

1949 La pesca del congrio. Boletín del Instituto

Nacional, 14(35):2-30, 2 fig. Santiago.

1950 Dos géneros nuevos de ninfálidos para

Chile. Anales de la Academia Chilena de

Ciencias Naturales, 15:5-15, 5 lam; (Re-

vista Universitaria, Universidad Católica

de Santiago de Chile, 35(1):5-15, 5 lam).

1952 Ausencia de dimorfismo sexual en Colias

flaveola Blanchard 1852 (Lepidoptera,

Pieridae). Revista chilena de entomología,

2:173-177, 4 fig.

1952 La pesca con redes. Boletín del Instituto

Nacional, 15(43):33-34, 1 fig. Santiago.

1953 La pesca de la albacora. Boletín del Insti-

tuto Nacional, 18(45): 27-28. Santiago.

1954 Lepidópteros nuevos para Chile. Lepidop-

tera, Pieridae. Revista chilena de

entomología, 3(1953):140-147, 12 fig.

1954 Principios de ciencias biológicas funda-

mentales en la educación general ordena-

das por W. Edgard Martin. Traducción de

Octavio Palma y José Herrera. Publica-

ciones de la Dirección General de

Educación Secundaria, 72 pp; 13x 18,5 cm.

1954 Laenseñanza de la zoología sistemática en

el liceo. Publicaciones de la Dirección

General de Educación Secundaria 58 pp,

13 lam f/n; 13 x 18,5 cm.

1955 Curso teórico - práctico de entomología.

José Herrera y María Etcheverry. Edito-

rial Universitaria, S.A. 560 pp, 1ll; 16 x 21

cm.

1955-1956 Los odonatos de Chile. José

Herrera, María Etcheverry y Humberto

Carrasco. Anales de la Academia Chilena

de Ciencias Naturales, 20:63-88; 6 lam b/

n con 33 fig (Revista Universitaria,

Universidad Católica de Santiago de

Chile, 40-41(1):63-88).

1956 Curso teórico - práctico de entomología.

José Herrera y María Etcheverry. Edito-

rial Universitaria, S.A. Tomo I, 294 pp; ill.

Tomo II, 314 pp, ill: 16 x 21 cm.

1957 Notas etnoentomológicas del pueblo de

Socaire. Carlos Munizaga y José Herrera.

Notas del Centro de Estudios

antropológicos de la Universidad de Chile,

1:3-8.

1957 Notas sobre insectos colectados en Putre

(3.600 m), Arica, provincia de Tarapacá.

Notas del Centro de Estudios

antropológicos de la Universidad de Chile,

IES,

1957 Los Pyrginae de Chile (Lepidoptera

Hesperiidae). J. Herrera, M. Etcheverry,

C. Hochleitner. Revista Chilena de

Entomología, 5:143-182; 19 fig, 1 lam.

1958 Los Nymphalidae chilenos. José Herrera,

María Etcheverry y Rodolfo Barrientos.

Anales de la Universidad de Chile año

CXVla, tercer trimestre, 111:237-268, 51

fig, 2 lam.

1958 Los Nymphalidae chilenos. José Herrera,

María Etcheverry y Rodolfo Barrientos.

Publicaciones anexas a los Anales. Edi-

ciones de los Anales de la Universidad de

Chile. Serie Azul N?2 3, 44 pp, 11 lam,

edición de 1.000 ejemplares 19 x 26 cm.

1958 Curso teórico - práctico de entomología.

José Herrera, María Etcheverry. Editorial

Universitaria. 324 pp; ill, 21 x 25,5 cm

(Existe una segunda edición de 1964).

1958 El problema de la enseñanza científica en

el liceo al 30 de junio de 1957. Octavio

Palma, José Herrera, María Etcheverry.

Editorial Universitaria, S.A. 128 pp; 16 x

21 cm.

1959 A revision of the butterfly genera

Theochila and Tatochila (Lepidoptera,

Pieridae). José Herrera and William D.

Field. Proceedings of the United States

National Museum, 108(3408):467-514; 17

113

plates b/n con 93 fig. Washington, USA.

1959-1960 Papilionidae de Chile. José Herrera y

María Etcheverry. Anales de la Academia

Chilena de Ciencias Naturales, 23:153-155

(Revista Universitaria, Universidad

Católica de Santiago de Chile 44-45:153-

155.

1959-1960 El concepto de especie. José Herrera

1960

1964

1965

1966

y María Etcheverry. Anales de la Acade-

mia Chilena de Ciencias Naturales,

23:157-163 (Revista Universitaria, Univer-

sidad Católica de Santiago de Chile, 44-

45:157-163).

Actualización de los nombres de los

ápidos estudiados por Claude Joseph.

Publicaciones del Centro de Estudios

Entomológicos, 1:61-64. José Herrera y

María Etcheverry.

Biología de Thanatopsyche chilensis (Phil-

ippi) (Lepidoptera). José Herrera y Jorge

Carrasco. Publicaciones del Centro de

Estudios Entomológicos, 6:33-43; 3 lam

con 20 fig.

Principios de biología moderna. Douglas

Marsland. Traducción del inglés de María

Etcheverry, José Herrera y Henry Lowick-

Russell. Editorial Universitaria. 616 pp, ill;

17,5 x 26 cm.

Etcheverrius y Palmaris nuevos géneros de

Satyridae andinos (Lepidoptera). Publica-

ciones del Centro de Estudios

entomologicos, 7:57-73.

Stuardosatyrus nuevo género de Satyridae

y revalidación de la especie williamsianus

Butler 1868. J. Herrera y M. Etcheverry.

Publicaciones del Centro de Estudios

Entomológicos, 7:74-77. (20 láminas con

63 figuras referentes a los dos trabajos

anteriores se ubican en las páginas 79-98).

Quilaphoetosus, Chillanella y Haywardella

nuevos géneros de Satyridae andinos

(Lepidoptera). Publicaciones del Centro

de Estudios Entomológicos, $:69-72.

Genitalia de los tipos de Satyridae de Chile

depositados en el British Museum. Publi-

caciones del Centro de Estudios

Entomológicos, 8:73-126; 28 lam con 93

fig. José Herrera y T.G. Howarth.

Ejemplar hermafrodita de OQuilaphoetosus

janirioides (Blanchard) (Lepidoptera Sat-

yridae). Publicaciones del Centro de Estu-

dios Entomológicos, $:127-133; 3 lam con

1970

1972

1974

1977

1982

1983

8 fig.

Una especie y dos subespecies nuevas de

Tatochila colectadas en la alta cordillera

de Antofagasta (Lepidoptera Pieridae).

Publicaciones del Centro de Estudios

Entomológicos), 10:5-17; 5 lam con 22 fig.

Revalidación de Butleria philippi (Butler)

1881 (Lep. Rhopalocera, Hesperiidae).

Publicaciones del Centro de Estudios

Entomológicos, 10:65-73; 2 lam con 11 fig.

José Herrera y María Etcheverry.

Mariposas comunes a Chile y Perú (Lepi-

doptera Rhopalocera). Revista peruana

de entomología, 15(1):72-74.

Curso teórico-práctico de entomología.

María Etcheverry y José Herrera. 386

pp,ill, proyectó la edición Mauricio Am-

ster. Editorial Universitaria, S.A. 18,5 x

26,5.

Auca delessei n sp, especie gemela de Auca

coctei Guerin; genitalia y cariotipos de las

ssp de Auca (Lepidoptera Satyridae). Pu-

blicaciones del Centro de Estudios

Entomológicos, 11:22-32; 4 lam.

The pierid butterflies of the genera

Hypsochila Ureta, Phulia Herrich-

Schiffer, Infraphulia Field, Pierphulia

Field, and Piercolias Staudinger. William

D. Field and José Herrera. Smithsonian

contributions to zoology, (232):4 pp s/n, 1-

64; 5 mapas; 19 lam con 198 fig.

Zoogcografía de las mariposas sudamerl-

canas de la rama “Tatochila - Phulia”.

Resúmenes VII Congreso Latinoameri-

cano de Zoología, Tucumán (Argentina),

pp 105-106.

La vida silvestre; ¿se extinguen las maripo-

sas en Chile? Academia, 3 (segundo y

tercer trimestre de 1982): 205-233; 5 fig; 3

tab; 1 lam. col-con 6 fig.; 7 lamb/n, f/n con

39 fig.; Academia Superior de Ciencias

Pedagógicas de Santiago.

La vida silvestre: ¿se extinguen las maripo-

sas en Chile? Publicaciones del Centro de

Estudios Entomológicos, 12:205-223; 5 fig,

3 tabl; 1 lam. col, f/n con 6 fig.; 7 lam b/

n, f/n con 39 (ig. Separata de la revista

Academia N2 3, 1982, Academia Superior

de Ciencias Pedagógicas de Santiago. (Se

conserva la numeración).

Cómo animar un jardín; embellecerlo con

mariposas. Primer Encuentro Científico

114

Rev. Chilena Ent. 20, 1993

1983

1984

1986

1987

1988

1989

sobre el Medio Ambiente Chileno. Vol. 1,

5 pp, 2 fig.

Acto conmemorativo del 502 aniversario

de la fundación de la Sociedad Chilena de

Entomología. V Reunión Nacional de

Entomología, p. 6-9.

Valor jerárquico de la genitalia en Lepi-

doptera. V Reunión Nacional de

Entomología, p. 28.

Biología de Cynthia carye Hiúbner 1812

especie críptica de C. annabella Field 1971

(Lepidoptera Nymphalidae). VI Reunión

Nacional de Entomología, p.27.

Presencia en Chile de Stuardosatyrus

villiamsianus Butler 1868. VIII Congreso

Nacional de Entomología, p. 38.

El profesor, su formación y las reformas.

Revista de Educación, 141:16-19, 3 fig

(octubre) Ministerio de Educación, Chile.

Prólogo. Acta entomológica chilena, 13:9-

10.

Pamperis poaoeneis Heimlich (Lep. Sat-

yridae), observaciones críticas y rectifica-

ciones de la venación alar y genitalia de

esta especie. Acta entomológica chilena,

13:161-166; 3 lam con 15 fig.

Biología de Cynthia carye (Húbner), 1812,

especie críptica de C. annabella Field, 1971

(Lepidoptera, Nymphalidae). Acta

entomológica chilena, 14:65-116; 26 lam

b/n; 4 lam col.

Profesor Dr. Amador Neghme R. (1913-

1987). Acta entomológica chilena, 14:231.

José Herrera y Raúl Cortés.

Observaciones sobre larvas de Phoebis

sennae amphitrite (Feisthamel) 1839

(Lepidoptera). Acta entomológica

chilena, 14:183-186; 1 lam col con 3 fig.

José Herrera, René Covarrubias y Lucía

Opazo.

Variaciones en Butleria flavomaculatus

(Blanchard 1852) y Butleria sotoi Reed

1877. X Congreso Nacional de

Entomología, p. 39.

Enseñanza de las ciencias naturales 1889-

1989. Dedicatoria rememorativa. Acta

entológica chilena, 15:7-8.

1989

1990

IES

1991

1992

Hallazgo en Chile de Stuardosatyrus

williamsianus (Butler) 1868 y considera-

ciones sobre el género (Lepidoptera, Sat-

yridae). José Herrera y Vicente Pérez.

Acta entomológica chilena, 15:171-195; 13

lam b/n con 39 fig.; 1 lam col con 14 fig.

Iconotipo de Cynthia carye (Húbner 1812)

(Lepidoptera, Nymphalidae). Acta

entomológica chilena, 15:265-267; 1 lam

col con 20 fig.

Antecedentes históricos y bibliográficos

para una historia de la Entomología en

Chile. Raúl Cortés y José Herrera. Acta

entomológica chilena, 15:297-321.

Amendment. Acta entomológica chilena,

15:328.

Recuperemos nuestras mariposas. XII

Congreso Nacional de Entomología, p. 32.

Grafismo versus armadura genital. XIII

Congreso Nacional de Entomología, p. 22-

Addenda et corrigenda. Acta ento-

mológica chilena vol. 16, 1990 (sic.). Acta

entomológica chilena, 16:291.

Revisión taxonómica del género Butleria

(Lepidoptera Hesperiinae). José Herrera,

C. Don Mac Neill y Juan Atria. Acta

entomológica chilena, 16:201-246; 6 fig., 1

tab., 3 mapas; 10 lam. b/n; 4 lam. col.

Fotografías del hermafrodita Qui-

laphoetosus janirioides (Blanchard) (Lepi-

doptera Satyridae). Acta entomológica

chilena, 16: 277-278, 9 fig.

La familia Papilionidae en Chile (Lepi-

doptera). José Herrera y Juan Atria. Acta

entomológica chilena, 17:21-35; 3 lam. b/

n con 18 fig.; 1 lam. col. con 4 fig.

Eiseliana and Heoda, high andean and

austral genera of the neotropical Euma-

eini (Lepidoptera, Lycaenidae). Kurt

Johnson, Lee, D. Miller and José Herrera.

Acta entomológica chilena, 17:107-146; 8

fig.; 16 lam.

Obituario. Dr. John F. Gates Clarke

(1905-1990). José Herrera y Raúl Cortés.

Acta entomológica chilena, 17:254.

MARÍA ETCHEVERRY

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 115.

ERNESTO KRAHMER GUTBERLET

(1931 - 1992)

Ha fallecido en la localidad de Santo Domingo,

provincia de Valdivia, Ernesto Krahmer Gutber-

let, el día 9 de agosto de 1992, marcando este

hecho el término de una vida caracterizada por el

interés a la naturaleza del sur de Chile.

Inició sus estudios en el Colegio Alemán de

su ciudad natal de Valdivia, concluyendo la

enseñanza media en el Liceo de Hombres

“Armando Robles”, de la misma ciudad. Poste-

riormente ingresó a la Escuela Superior de Agri-

cultura “Adolfo Mathei” de Osorno, de la cual

egresó el año 1951, con el título de Perito

Agrícola.

Desde su juventud, la vida de Ernesto

Krahmer transcurrió ligada a la Entomología,

estudiando en terreno los hábitos y la biología de

variados insectos asociados a los bosques valdivi-

anos y formando una importante colección de

insectos representativos de Valdivia. Su incan-

sable entusiasmo y dedicación, le permitió ad-

quirir un amplio conocimiento del hábitat y los

hospederos de numerosas especies de insectos

fitófagos, muchas de los cuales habían sido con-

sideradas como rarezas hasta entonces, como así

mismo recolectar por primera vez en varias opor-

tunidades, algunas especies desconocidas para la

ciencia. Esto le valió el reconocimiento de nu-

merosos científicos, concretado a través de la

dedicación de especies o subespecies por él des-

cubiertas.

Su amistad sin interés, ligada a la hospitalidad

de su esposa Cristina y de sus hijas Verónica e

Irene, hicieron de su hogar un refugio siempre

abierto para los innumerables entomólogos chile-

nos y extranjeros que le visitaron, ganándose un

profundo aprecio y consideración de quienes le

conocieron en la intimidad de su hogar.

Su muerte aconteció en el ambiente natural

que indudablemente más amaba bajo la sombra

de los hualles y laureles y el sonido de la natu-

raleza.

MaArcos BEÉCHE CISTERNAS

RICHARD B. SELANDER

A mediados de agosto de 1992, víctima de un

ataque cardíaco, falleció en Gainesville, Florida,

U.S.A., el Dr. Richard B. Selander destacado

entomólogo dedicado al estudio de los Meloidae

a nivel mundial. Perteneció al staff de profesores

del School of Life Sciences de la Universidad de

Mlinois Urbana-Champaign en Illinois. Una vez

retirado por edad, se radicó en Gainesville, como

asociado a la Colección de Artrópodos de Florida,

trasladando toda su inmensa colección y su labo-

ratorio a este lugar. Lo conocimos personalmente

en Illinois en 1957, concretando una gran amistad,

que ya venía desde hacía varios años.

Realizó varios viajes a América del Sur.

Visitó Chile, Argentina, Perú y Brasil en varias

oportunidades, en busca de ejemplares que él

mantenía en crianza para lograr la oviposición y

así obtener los estadios inmaduros, tan difíciles de

encontrar en la naturaleza, y así asociarlos a los

adultos.

Viajó con nosotros en numerosas visitas a

Sudamérica por cordilleras, bosques y desiertos.

Era un hombre sensible, amable y entretenido por

su gran conocimiento. En extremo afable, sencillo

y entusiasta en su interesante quehacer, lo hacía

muy querido por los que lo conocían.

Sus trabajos son muy numerosos y de gran

valor taxonómico, en los cuales logró dilucidar

muchos problemas que existían en el cono-

cimiento de los meloídeos. Revisó muchos

géneros, describiendo varias especies. Quedaron

en borrador las revisiones de los Meloidae de

Chile, con descripción de algunas especies y de

estudios de la biología de la gran mayoría de ellas.

Entre sus aficiones extra-científicas se desta-

caba la música ruidosa y el uso de instrumentos

de percusión, llegando a participar en grupos

musicales en Urbana.

La pérdida de Dick ha producido un pro-

fundo sentimiento en las personas que lo tuvieron

cerca, así como en nosotros que trabajamos en

tantas oportunidades con él. Su deceso ha sido

para nosotros y para muchos de los que lo cono-

cieron, motivo de una gran congoja.

Luis E. PEÑA G.

Richard B. Selander observando la crianza de Pseudomeloe

en uno de sus viajes al Desierto de Atacama (Chile)

Rev. Chilena Ent.

1993, 20: 117-118.

INSTRUCCIONES DE LOS AUTORES

Las colaboraciones para la Revista Chilena de

Entomología (publicada anualmente) deberán

corresponder a investigaciones originales,

inéditas, sobre Entomología en cualquiera de sus

especialidades, aspectos o relaciones, con las citas

bibliográficas o revisión de literatura necesarias

para fundamentar el nuevo aporte, y con especial

referencia a Chile o a la región Neotropical.

La recepción de trabajos será continua. La

aceptación dependerá de la opinión expresada

por a lo menos dos revisores. La publicación se

hará en estricto orden de aceptación, dejándose

expresa constancia de las fechas de recepción y

aceptación definitiva de los manuscritos.

Los trabajos deberán estar escritos a

máquina, a doble espacio, en hoja tamaño carta,

con un margen de 25 cm. por lado cada hoja se

numerará correlativamente y llevará el apellido

de los autores. Los autores de trabajos que utili-

cen impresoras para sus originales, deberán poner

especial atención en cuanto a que el texto sea

absolutamente legible. Deberá evitarse el uso de

neologismos y de abreviaturas no aceptadas inter-

nacionalmente.

Los autores deberán financiar parte de los

costos de impresión.

Los originales, incluyendo 2 copias, se deben

dirigir a:

Editor

Revista Chilena de Entomología

Casilla 21132

Santiago (21), CHILE

Los trabajos redactados en español y portugués

(en este último caso previamente autorizados por

el Comité Editorial), incluirán un resumen en

inglés, a continuación del resumen escrito en el

idioma que corresponda.

Se sugiere que cada artículo científico conste

de las siguientes secciones: Resumen y Abstract,

Introducción, Materiales y Métodos, Resultados,

Discusión (pudiéndose refundir estos últimos),

Agradecimientos, Literatura Citada y Tablas y

Figuras.

El título debe ser breve, escrito en español e

inglés, y se debe incluir palabras claves (key

words) a continuación de cada resumen.

Los trabajos taxonómicos deben ceñirse a las

recomendaciones del Código Internacional de

Nomenclatura Zoológica; las descripciones de

nuevos taxa deben incluir figuras adecuadas a tal

propósito.

Indique mediante notas marginales en el

texto la localización preferida de Tablas y Figuras.

Las llamadas al pie de página deberán indi-

carse mediante un número, con numeración

correlativa a lo largo del manuscrito.

Las menciones de autores en el texto deberán

ser hechas sólo con inicial mayúscula ej.:

González; los nombres de autores de la Literatura

Citada deberán ser escritos con mayúscula, ej.:

GONZÁLEZ. El término Bibliografía se reserva

para aquellos casos en que se efectúa una

recopilación exhaustiva sobre un determinado

tema.

Ejemplos de

bibliográficas:

Frías L., D., 1986. Biología poblacional de Rhago-

letis nova (Schiner) (Diptera: Tephritidae).

Rev. Chilena Ent. 13: 75-84.

Toro, H. y F. RoJas, 1968. Dos nuevas especies

de Isepeolus con clave para las especies chile-

nas. Rev. Chilena Ent., 6: 55-60.

GREZ, A.A.; J.A. SIMONETTI y J.H. IPINZA-REGLA

1986. Hábitos alimenticios de Camponotus

morosus (Smith, 1858) (Hymenoptera:

Formicidae) en Chile Central. Rev. Chilena

Ent., 13: 51-54.

menciones de citas

Note que se resalta los nombres científicos y el vo-

lumen de la revista. En el caso de títulos que

incluyan nombres genéricos o específicos, deberá

llevar en paréntesis el Orden y la Familia a que

pertenecen, separados por dos puntos. Se acep-

tará la cita abreviada del nombre de la Revista

(propuesta por sus editores) o en su defecto el

nombre completo de la misma, cuidando adoptar

un criterio uniforme.

CLOUDSLEY-THOMPSON, J.L., 1979. El hombre y la

biología de zonas áridas. Editorial Blumé,

Barcelona.

Brrrron, E.B., 1979. Coleoptera: In: CSIRO

(ed.), The insects of Australia, pp. 495-621.

Melbourne University Press, Carlton.

BurckHARDr, D. (en prensa). Jumping plant lice

(Homoptera: Psylloidea) of the temperate

118 Rev. Chilena Ent. 20, 1993

Neotropical region. Part. 3: Calophyidae and

Triozidae. Zoological Journal of the Linnean

Society.

BLANCHARD, C.E., 1851. FAsMIANOS. In: C. Gay

(ed), Historia Física y Política de Chile.

Zoología, 6: 23-29. Imprenta de Maulde et

Renou, Paris.

Nótese que en el penúltimo caso no se indica

fecha ni volumen de supuesta publicación.

Las citas en el texto se hacen por la mención

del apellido del autor seguido del año de

publicación, separados por una coma. Varios

trabajos de un mismo autor publicados en el

mismo año, deberán diferenciarse con letras

minúsculas (ejemplo: Rojas, 1981a, 1981b y

1981c); para citas de trabajos de dos autores se

deben mencionar los apellidos de ambos (ejem-

plo: Rojas y Cavada 1979); trabajos de más de dos

autores deberán ser citados por el apellido del

primer autor seguido de ef al., varios trabajos

citados dentro de un paréntesis deberán ser sep-

arados por punto y coma (ejemplo: Frías, 1986;

Toro éz Rojas, 1968; Grez et al., 1986 y Rojas 8

Cavada, 1979).

La primera vez que se cite en el texto un

nombre científico, deberá llevar el nombre de su

descriptor (ejemplo: Peloridora kuscheli China,

1955) y en lo posible el año de su descripción.

Todas las palabras en latín, incluso abreviaturas

en latín, deberán ser subrayadas.

Gráficos, diagramas, mapas, dibujos y

fotografías llevarán la denominación de Figuras

(abreviado como Fig. en el texto); se usará el

término Tabla para designar cualquier conjunto

de datos presentados en forma compacta.

Se deberá proporcionar en una hoja aparte,

un encabezamiento de página (título acortado) de

no más de 80 caracteres, incluyendo espacios y

apellido del autor (ejemplo: Guerrero et al.:

Acción parasitaria de himenópteros sobre Plutella

xylostella L.).

Los dibujos deben ser hechos con tinta china

negra y papel diamante o en papel blanco de

buena calidad pudiendo usarse además, materia-

les autoadhesivos (letra set u otros). Las

fotografías deberán ser en blanco y negro, papel

brillante y con buen contraste e intensidad. La

impresión a color será de cargo de los autores.

Las figuras llevarán leyenda corta, precisa y

autoexplicativa y serán numeradas correlativa-

mente. Para su confección se deberá tener en

cuenta las proporciones de la hoja impresa de la

revista.

Las figuras que excedan el tamaño de la hoja

deberán ser diseñadas considerando la reducción

que sufrirá el original. Usar escalas gráficas.

Las leyendas y explicaciones de figuras

deberán mecanografiarse en hoja aparte.

Cada ilustración deberá llevar además del

número, el nombre del autor, las cuales deben

escribirse con lápiz grafito en su margen o en el

reverso en el caso de fotografías.

El número de cuadros y figuras debe limi-

tarse al mínimo indispensable para comprender el

texto.

Pruebas de imprenta: el autor recibirá una

prueba que deberá devolver corregida dentro de

los 10 días posteriores a su envío.

Separatas: el o los autores recibirán gratui-

tamente un total de 50 separatas por trabajo. Si

desea un número mayor, deben solicitarse y

cancelarlas anticipadamente. La cantidad adi-

cional debe ser indicada al devolver las pruebas de

imprenta.

CONTENIDO

ARIas T., E. Cuarentena Vegetal y principales insectos causales de rechazo en productos frescos

paa PATO a E Oe Eo Oo coCCO COTO 95

BARRIGA T., J.E.; T. CurKovIC S.; T. FicHer L.; J.L. HENRÍQUEZ s. Y J. MAcAYA B. Nuevos

antecedentes de coleópteros xilófagos y plantas hospederas en Chile, con una recopilación de citas

A OS Orea amooo 65

BRRRIGANIES véase T. FICHET Y JE. BARRIGA. teomoconsonocovon too tninociocnieiousunnennennennenponiannnc nn noc en ten tanc coda scno dende 5

CERDA G., M. Nuevos cerambícidos de Chile (Coleoptera: Cerambycidae). ..ooonoconononononononononmmo. 13

Cortés, X.; V.R. JEREZ Y R. GALLEGUILLOS. Estudio electroforético en dos especies simpátricas y

sintópicas del género Procalus Clark, 1865 (Coleoptera: Chrysomelidae). .....ooooconoconononmmmsmmom.. 43

CUREDVMO Des Mes VERSA NU AR EESO 65

De Sanris, L. y A.E.G. DE SUREDA. Una nueva especie de Strepsiptera de Chile y dos nuevos

registros para la insectofauna de la República Argentina (Embioptera y Thysanoptera). ................ 61

ELGUETA D., M. Invertebrados asociados a suelo en bosque de Nothofagus pumilio (Poepp. et

Endl.) Krasser, XII Región - Chile, con especial referencia a:Ínsecta. ...ococonconononionionincnonnncoenrmeoss 49

FicHer, T. Y J.E. BARRIGA. Observaciones preliminares sobre la biología y plantas hospederas de

Neotaphos rachelis, Fisher 1937 (Coleoptera: Cerambycidae). ..oooocinininonnnnnnonononononononanonononacanananananonaneso 3)

EE Ja Ue A] Y ANO os 65

Frrrz, M.A. Y A. MARTÍNEZ. Notas sinonímicas de Mutillidae neotropicales (Hymenoptera). ........ 9

SALADO o ER NIN O AR OSaLO 23

TAB TULL 1 VERSO ANI OS 43

GonzÁLEz, R.H. El ácaro del tostado de los cítricos, Phyllocoptruta oleivora (Ashmead)

(Eriophyidae), no ataca olivos ni existe en Chile Continental. .........ooncnononiconnnononororocoonononacinnonanacacnononoso 93

HENRÍQUEZ bo vcase INE SBARRIGA e ELTOÍS cecoasconanconoononnaancono nos sarosoneaoaoeososscaasoc aso ocoso So Sono Sono SoaSnoSN 65

IBARRA V., H. y L.E. PARRA. Descripción de los estados preimaginales y aspectos de la historia

natural de Eupithecia horismoides Rindge, 1987 (Lepidoptera: Geometridae), perforador del

peciololdelipangue ((Glunnera Mnclona ae ccccnsnononedo nono tononoto cio cotoioesntenezoze sones usa s0NUssioIdRVioSND0S0de seseS0 sas aiaa0SS 35

IpINzA R., J.; A. GALANO Y M.A. MORALES. Ambito de hogar de Carmponotus morosus Smith, 1858

E 23

TEREZAVAR Case 2. CORTES O Nal. cartas dance ondsanaencotocnnesenisnnnaenenodonsococOJianAsinnsssVan ei SEAOcOD Acc OS iia B Ocio CSinS 43

IMACA YA Bl vcase JE. BARRIGA GD. Chal oiccadonodaesanoneciosannineondontanociaqreondodoaesn codo sSDa Dolo si DOS OSA SCA dOS 65

INTÍARTNEZA: véase MA: ¡ERTEZ Y Ac MARTÍNEZ: c0cooonconocónocodnconn nac esca dins 9

MORATES MEA Cas PZA nds 28

MORRONE, J.J. Revisión de las especies de Listroderes Schoenherr del grupo curvipes (Coleoptera:

Co OE RS 15

RARRAIcE: véase El. IBARRA Y. y LE. PARRA: iocoootalcasoseiondsnane iso nco ndo coaone one o oa cnto ceros gerona econ cts us 35

SÁrz, F. Importancia de la persistencia, en el árbol, de frutos de Acacia caven en la infestación por

Pseudopachymerina spinipes (Coleoptera: Bruchidae). .......ocooononninnnonononarncononoonononocononnonononocnonononocionononanes 31

SUREDA TAME (6) de véase Lo De SANTIS Y AVE: DE SUREDAS inn eooonsdenoeoos otra tossconacenin des 61