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HARVARD UNIVERSITY

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Library of the

Museum of

Comparative Zoology

1 o

ISSN 0034 - 740X

Conspice naturam,

VOL. 21 (1994)

Inspice structuram!

REVISTA CHILENA

D E

ENTOMOLOGIA

REVISTA CHILENA DE ENTOMOLOGIA

Propietaria de la Revista:

SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA

Domicilio legal:

Sección Entomología, Museo Nacional de Historia Natural,

interior Quinta Normal, Santiago

Personería Jurídica concedida por

Decreto Ministerio de Justicia N“2.204, del 10 de Agosto de 1965

Fundada en Santiago el 4 de Junio de 1922,

con el nombre de Sociedad Entomológica de Chile

Consolidada y reorganizada con el nombre de

Sociedad Chilena de Entomología el 30 de Marzo de 1933

Toda correspondencia y colaboraciones deben ser dirigidas a:

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ISSN 0034 - 740X

VOL. 21 (1994)

Conspice naturam,

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pS PASEA FEE NA

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ENTOMOLOGIA

La publicación del presente volumen

ha sido posible gracias al generoso legado efectuado a nuestra Sociedad

por el Dr. Charles P. Alexander

Impreso por:

Impresos OGAR,

Roberto Espinoza 1538 - Santiago

en el mes de Diciembre de 1994

Rev. Chilena Ent.

1994, 21:5- 30

LAS ESPECIES CHILENAS DE CNEMALOBUS GUERIN-MENEVILLE 1838

(COLEOPTERA: CARABIDAE: CNEMALOBINI)

SERGIO ROIG-JUÑENT l

RESUMEN

Cnemalobus Guérin-Ménéville 1838. es un género de Carabidae endémico de América del Sur austral

con veintitres especies. Esta revisión de Cnemalobus incluye claves para el reconocimiento de las

especies chilenas y un estudio sistemático de las siguientes especies: C. convexus Germain, C.

araucanus Germain, C. germaini Putzeys, C. obscurus (Brullé), C. sulciferus Philippi. C. cyaneus

(Brullé), C. pegnai (Negre) y C. substriatus (Waterhouse). Siete especies son descritas como

nuevas: C. pulchellus, C. striatipennis, C. cylindricus, C. nuriae, C. piceus, C. montanus y C.

reichardti.

ABSTRACT

Cnemalobus Guérin-Ménéville 1838, an endemic carabid beetle genus from southern South America

includes twenty three species. This revision of Cnemalobus includes keys for chilean species

recognition and a systematic study of these species: C. convexus Germain, C. araucanus Germain, C.

germaini Putzeys, C. obscurus (Brullé), C. sulciferus Philippi, C. cyaneus (Brullé), C. pegnai

(Negre), and C. substriatus (Waterhouse). Seven species are describe as new: C. pulchellus, C.

striatipennis, C. cylindricus, C. nuriae, C. piceus, C. montanus, and C. reichardti.

INTRODUCCION

Cnemalobus Guérin-Ménéville 1838 (Carabi-

dae: Cnemalobini) es un género endémico de

América del Sur austral. Recientes aportes

(Roig-Juñent, en prensa a) lo consideran como

un grupo monofilético, con estrechas relacio-

nes con la tribu holártica Zabrini (Harpalinae).

Cnemalobus posee veintitres especies, catorce

son endémicas de Chile, dos en común entre

Chile y Argentina, seis endémicas de Argen-

tina y una común a Argentina y Uruguay.

Su distribución abarca en Chile desde el

Norte Chico (región de Coquimbo) hasta los

bosques secos de Nothofagus en la región de

Instituto Argentino de Investigaciones de las Zonas

Aridas, CC 507, 5500 Mendoza-Argentina.

(Recibido: 6 de enero de 1993. Aceptado: 22 de abril

de 1993.)

la araucanía. La mayor cantidad de especies

se encuentra presente en las regiones mon-

tañosas de las provincias centrales. Una sola

especie, C. curtisii (Waterhouse 1841), ha sido

encontrada en la estepa patagónica en la

provincia de Aysén.

Este trabajo constituye el tercer aporte para

la revisión del género Cnemalobus (Roig-

Juñent, en prensa a, b) y comprende el estudio

sistemático de las especies endémicas de

Chile, razón por la cual no se redescriben C.

curtisiz ni C. araucanus Germain 1901 aún

cuando dichas especies se incluyen en la

clave.

MATERIAL Y METODOS

El material examinado procede de las colec-

ciones depositadas en las siguientes institucio-

nes: BMNH: British Museum (Natural

History) (Gran Bretaña) (Stuart Hine); CLP:

Colección Luis Peña(Chile); FIML: Fundación

6 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

e Instituto Miguel Lillo (Argentina) (Abraham

Willink); TADIZA: Instituto Argentino de In-

vestigaciones de las Zonas Aridas (Argentina);

INCO: Departamento de Zoología del Instituto

Central de Biología de la Universidad de Con-

cepción (Chile) (Tomás Cekalovic); IPCN:

Instituto Patagónico de Ciencias Naturales

(Argentina) (Mario Gentili); MACN: Museo

Argentino de Ciencias Naturales Bernardino

Rivadavia (Argentina) (Axel Bachmann);

MHNS: Museo Nacional de Historia Natural

de Santiago (Chile) (Mario Elgueta); MLP:

Museo de La Plata (Argentina) (Ricardo Ron-

deros).

Métodos de disección. Estos son los mismos

utilizados por Roig-J. (1992).

Medidas. El largo del cuerpo se tomó desde

la base del labro hasta el ápice del élitro. La

relación largo versus ancho del pronoto (l/a)

se tomó con el largo en la línea media y el an-

cho máximo del pronoto. El largo del élitro se

midió desde el ápice del escudete hasta el

ápice del élitro y el ancho desde el borde ex-

terno del élitro hasta la línea media.

Ilustraciones. Se realizaron con cámara clara

adaptada a un microscopio estereoscópico.

Las escalas de las figuras representan 1 mm.

Terminología usada. Para el edéago se

siguió la terminología propuesta por Jeannel

(1955) y para el genital femenino la sugerida

por Britton (1970).

Cuando la cantidad de setas del lado

izquierdo y derecho del ejemplar presenten di-

ferencias se citan las dos cifras separadas por

una coma.

RESULTADOS

CNEMALOBUS Guérin-Ménéville, 1838.

Historia taxonómica

Guérin-Ménéville (1838) consideró que las

especies chilenas de Cnemacanthus Gray 1832

debían agruparse en una sección nueva que de-

nominó Cnemalobus. Waterhouse (1841) las

agrupó en el género Odontoscelis Curtis 1839.

Sin embargo el nombre Odontoscelis estaba

preocupado y por ello se propusieron como

nombres de reemplazo a Scaritidea Water-

house 1842 y a Scelodontis Curtis 1845.

Estos problemas han llevado a numerosas

confusiones nomenclatoriales. Un tratamiento

más completo puede verse en el primer aporte

(Roig-J, en prensa a).

Consideraciones sistemáticas

Cnemalobus es un conjunto monofilético de

especies (Roig-Juñent, en prensa a) y la

estructura del edéago (lóbulo medio acodado,

bulbo basal ancho; parámeros desiguales), del

tergito 8 de la hembra (presencia de epitergi-

tos) y de la morfología externa (cavidades

coxales anteriores uniperforadas, pubescencia

antenal desde el cuarto segmento y seta prono-

tal posterior presente) indican su afinidad con

la Supertribu Pterostichitae.

Dentro de Pterostichitae, Cnemalobus, con-

forma una tribu monogenérica (Cnemalobini)

debido a los estados de caracteres: gran canti-

dad de setas supraorbitales; serie lateral nu-

merosa y presencia de una serie suplementaria

de setas elitrales.

Como diagnosis de la tribu podemos men-

cionar: Cabeza con 1-5 setas superciliares,

mandíbulas sin seta en el escrobo; diente del

mentón indiviso; cavidades precoxales uniper-

foradas y cerradas posteriormente; cavidades

mesocoxales conjuntas: pretarso con dos pares

de escuamo setas; serie umbilicada con nu-

merosas setas, con una serie de setas suple-

mentarias. En la estructura genital masculina

encontramos: parámero derecho conchoide,

sin setas; espermateca tubular, sésil, con un

receptáculo basal.

CLAVE PARA LA IDENTIFICACIÓN DE

LAS ESPECIES DEL GÉNERO

CNEMALOBUS PRESENTES EN CHILE

l. Antenitos muy pubescentes (Fig. 7); estría 8 en el

hombro humeral forma un doblez que llega hasta la

basdl es SA 2

l”. Antenitos pubescentes sólo en las regiones laterales

(Figs. 4-6); estría 8 en el hombro humeral sin doblez .

proto ate DUES alo pla [ao 3

2- Estrías de los élitros marcadas (Fig. 37); superficie

dorsal del élitro plana; octava estría poco separada de

la serie lateral de setas en el tercio apical..........

C. reichardti sp. nov.

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile

Figuras 1-19: Figuras 1-3 antenitos 10 y 11 de: 1, Cnemalobus striatus; 2, C. pulchellus: 3, C. desmarestii, figs. 4-7 anteni-

tos 4 y 5 de; 4, C. striatus; S, C. pulchellus; 6, C. desmarestii, 7, C. cylindricus; figs. 8-11 protórax de 8-9, C. pegnai en

vista lateral y ventral; 10-11, C. piceus en vista lateral y ventral; figs. 12-15 pieza copulatriz; figs. 12-13 de tipo cilíndrica

(C. convexus); 14-15 de tipo espatulado (C. piceus); figs. 16-19, protarsitos 1 del macho de: 16, C. striatus en vista lateral

(sl, seta lateral); 17, idém C. convexus; 18, en vista ventral de C. striatus; 19, idém C. pulchellus. (svl, seta ventrolateral).

Di

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Estrías apenas marcadas (Fig. 38); superficie dorsal

del élitro convexa; octava estría muy separada de la

serie lateral de setas en el tercio apical. ...........

C. cylindricus sp. nov.

Octava estría paralela a la serie lateral de setas, muy

próxima a os, 4

Octava estría no paralela a la serie lateral de setas

separadado cl A do 6

Antenitos 4-10 muy alargados (como en Figs. 3,6);

una sola seta superciliar; margen del pronoto muy an-

choltentto do

C. curtisil (Waterhouse 1841)

Antenitos 4-10 redondeados (Figs. 1, 4) o subrectan-

gulares (Figs. 2, 5), no más de dos veces más largos

que anchos: dos o más setas superciliares. ........ 5

Setas pronotales ocupan toda la longitud del pronoto;

con un conjunto desordenado de setas en la base del

EMO ed C.araucanus Germain 1901

Setas pronotales a lo sumo ocupando los dos tercios

anteriores; base del élitro sin conjunto desordenado de

C. pulchellus sp. nov.

Apófisis prosternal larga, con su borde posterior cón-

cavo (Figs. 8, 9); prosterno con gran cantidad de setas

que ocupan los dos tercios posteriores; protarsito 1 del

macho con una hilera de setas ventrolaterales (como

ME A o 1

Apófisis prosternal corta, si alargada como en figuras

10 y 11, con su borde posterior recto; prosterno con

pocas setas, generalmente desde el comienzo de la

Figuras 20-33: Protórax de: 20, Cnemalobus convexus; 21, C. nuria; 22, C. pegnai; 23, C. reichardti; 24, C. cylindricus, 25,

C. cyaneus, 26, C. substriatus; 27, C. obscurus; 28, C. germaini; 29, striatipennis; 30, C. montanus,; 31, C. piceus; 32, C.

pulchellus; 33, C. sulciferus.

7

8”

10

11

112

12

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 9

cavidad coxal; protarsito 1 del macho con un grupo

desordenado de setas ventrolaterales (como en Fig.

(Do A NN 9

Coloración verde esmeralda, estrías de los élitros muy

marcadas (Fig. 36); estría 8 paralela a la lateral a par-

tir de la mitad del élitro hasta próximo al ápice; serie

lateral con gran cantidad de setas (63); protarsito 1 del

macho con una seta lateral (como en Fig. 16) .......

C. pegnai (Négre 1973) nov. comb.

Coloración negra o azul Prusia; élitros sin estrías;

estría 8 subparalela o no paralela a la lateral; serie la-

teral con pocas setas (13-33); protarsito 1 del macho

con dos setas laterales (como en Fig. 17)......... 8

Coloración dorsal azul Prusia; epipleura del pronoto

ancha, no angostada en el medio; pronoto con 14-21

setas anteriores y una seta en la foseta posterior. ....

C. nuria sp. nov.

Coloración negra; epipleura del pronoto delgada, an-

gostada en el medio; pronoto con 23-38 setas y dos o

es lA OSA POEIOS eos ao soooosecooose se

Estría 8 muy profunda; interestría 9 convexa y ancha

apicalmente; estría 7 con setas basales, sin apicales. . .

ooo 10

Estría 8 poco profunda o no marcada; interestría 9

poco convexa y ancha; estría 7 con setas basales y

cl A TA ¡122

Región posterior del margen pronotal apenas más an-

cho que la región central (Fig. 33); epipleura pro-

torácica más ancha apicalmente que al centro; élitros

aplanados dorsalmente; saco interno con región media

muy ensanchada; lóbulos basales ausentes; lóbulo api-

cal de base estrecha y ápice redondeado. ..........

C. sulciferus Philippi 1864

Región posterior del margen pronotal más ancho que

la región central (Figs. 28, 29); epipleura protorácica

tan ancha como la región central; élitros convexos

dorsalmente; parte media del saco interno no más

ancha que el resto; lóbulo basal (1) presente; base del

lóbulo apical de igual ancho que el resto; ápice recto .

IS O o dd as A A, 11

Con estrías elitrales (Fig. 64); ángulo posterior del

pronoto recto y ensanchado (Fig. 29); tibia anterior

pocojensanchad enn

e ca C. striatipennis sp. nov.

Sin estrías elitrales (Fig. 62); ángulo posterior del

pronoto circular, no ensanchado (Fig. 28); tibia ante-

Horna) ensanchadaienclmn di OE

o PSA 1 A C. germaini Putzeys 1868

Margen del pronoto angosto, no ensanchado posterior-

mente (Fig. 27); pronoto acorazonado, estrechado pos-

teriormente; epipleura protorácica angosta, región

media más angosta que la anterior................

O OE C. obscurus (Brullé 1934)

Margen del pronoto ensanchado posteriormente (Figs.

25, 26, 30, 31); pronoto no tan estrechado posterior-

mente; epipleura protorácica ancha, no angostada cen-

Mt e Udo seee 13

Antenitos 4-10 subredondeados (como en Figs. 1, 4);

contorno del pronoto subcircular, con su parte más

ancha centralmente; superficie dorsal del pronoto y

élitro convexa; cuerpo globoso................ 14

13” Antenitos 4-10 subrectangulares (Figs. 2, 5); contorno

del pronoto angosto atrás, con su parte central sub-

paralela; superficie dorsal del pronoto y élitro plana;

cUBIpolesDelto. Ia a ron iRicicd le 15

14 Surco basal del último esternito abdominal escotado

en el medio; estrías apenas marcadas; lóbulo apical

ancho le yementecu ado

AS C. cyaneus (Brullé 1834)

14” Surco basal del último esternito abdominal recto;

estrías no marcadas; lóbulo apical largo, delgado y

¡EOS doo C. substriatus (Waterhouse 1841)

15 Apófisis prosternal larga (Figs. 10, 11); lóbulo apical

dellsacointermolen is (Bio SS

RA ls e a oe C. piceus sp. nov.

15” Apófisis prosternal corta; lóbulo apical redondeado o

C. montanus sp. nov.

CNEMALOBUS CONVEXUS Germain 1901

(Figs. 12, 13, 17, 20, 34, 41, 42, 55, 60)

Cnemalobus convexus Germain, 1901: 190;

1911: 53; Csiki, 1928: 15; Blackwelder, 1944:

28.

Observaciones. En la serie de sintipos del

Museo de Historia Natural de Santiago de

Chile se encontró un ejemplar hembra que es

considerado en este trabajo como per-

teneciente a otra especie.

Debido a la existencia, en la serie de sin-

tipos, de ejemplares de distintas especies se

consideró necesario la designación de lec-

totipos.

Redescripción. Lectotipo macho (Fig. 34);

largo: 18,24 mm. Coloración totalmente ne-

gra. Glosa con dos setas lateroapicales; borde

anterior recto, ángulos anteriores sobresalien-

tes; mentón sin setas; diente largo, poco más

corto que los epilobos. Antenas con antenitos

aplanados, de contorno subredondeado, con

setas sólo lateroapicales. Ojos poco globosos,

acuminados; borde anterior recto, posterior

levemente curvado, oblicuo; base del ojo an-

gosta. Pronoto (Fig. 20) transversal (l/a =

0,67); superficie dorsal convexa; borde poste-

rior recto; epipleura angosta centralmente;

márgenes angostos, no ensanchados hacia

atrás, con 29, 31 setas próximas entre sí y dis-

tribuidas en los tres cuartos anteriores del

margen; 2, 3 setas en la foseta posterior; ángu-

los posteriores redondeados. Prosterno con

gran cantidad de setas, que ocupan casi los dos

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

10

ERES

muera o

NY) NA y =

A ATA

Figuras 34-40: Machos de: 34, Cnemalobus convexus; 35, C. nuria; 36, C. pegnai; 37, C. reichardti; 38, C. cylindricus; 39,

C. cyaneus; 40, C. substriatus.

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 11

tercios posteriores; apófisis prosternal larga

(como en Figs. 8, 9). Elitros convexos de bor-

des subparalelos (l/a = 3,08), lisos; canaleta

poco profunda; interestría 3 con dos setas api-

cales; estría 7 sin setas; estría 8 con 36, 39

setas, no paralela a la serie lateral y poco dis-

tanciada de ésta; interestría 9 plana, no en-

sanchada en el tercio apical; serie lateral con

18, 20 setas. Protibia poco ensanchada en su

parte media; espolón tibial alcanzando el pro-

tarsito 2; protarsitos muy expandidos en el

ápice externo, 1 casi tan ancho como largo,

con dos setas laterales (Fig. 17) y una hilera

de setas ventrolaterales (como en Fig. 18); 2 y

3 doble de ancho que largo, con una seta dor-

solateral. Genital (Figs. 41, 42) con lóbulo

medio delgado, de ápice alargado; lígula dere-

cha ancha y corta, no adelgazada en el ápice;

saco interno no ensanchado, pequeño, sin

lóbulos basales y con lóbulo apical delgado y

más corto que la pieza copulatriz; pieza copu-

latriz cilíndrica, grande (Figs. 12, 13).

Paralectotipo hembra. Largo: 17,48 mm.

Pronoto l/a 0,70; élitros l/a = 3,09. Setas:

pronoto con 24, 29 laterales y dos posteriores;

interestria 3 con una, dos apicales; estría 8 con

33, 34; serie lateral con 22, 24. Espolón tibial

largo y ancho alcanzando el protarsito 4; pro-

tarsitos poco ensanchados lateralmente, 2 y 3

con una seta ventrolateral. Genital (Fig. 55)

con espermateca larga y curva; bursa de la es-

permateca corta (largo menor a dos veces el

ancho); distancia entre bursa y ducto común

larga; ducto común largo, con ampolla; glán-

dula espermatecal piriforme y alargada; estilos

largos y curvados, con ápice de punta roma.

Variación intraespecífica. Largo: 12,60-

18,24 mm. Pronoto l/a = 0,55-0,70; élitros l/a

= 3,00-3,37. Setas: mentón con o sin ellas;

pronoto con 23-38 laterales y 2-3 posteriores;

interestría 3 con 1-2 apicales; estría 8 con 31-

40; serie lateral con 18-33.

Distribución. Los ejemplares capturados

fueron hallados en la regiones chilenas de Co-

quimbo y Valparaiso (Fig. 60).

Material examinado. Lectotipo JÍ Co-

quimbo, col. P.Germain (MHNS, nro. 2704).

Paralectotipos 4938 399, Chile, Coquimbo

(MHNS, nros. 2700, 2701, 2702, 2703, 2705,

2707, 2708).

CHILE. COQUIMBO: 1% Fray Jorge 28-XI-

1980, col. Moyano (INCO); 1% 13-18-1947,

col. L. Peña (MHNS); 19 Pachingo, 10-XI-

1947, col. L. Peña (MLP); 19 Talinay 13-9-

1984, col. Romero (INCO); 19 24-VI-1986,

col. Ortiz (INCO). VALPARAISO: 19 Lo

Aguila (MHNS). SIN LOCALIDAD PRE-

CISA: 19 col. C. Farga (MHNS).

CNEMALOBUS NURIA sp. nov.

(Figs. 21, 35, 43, 44, 56, 60)

Descripción. Holotipo macho (Fig. 35),

largo: 13,41 mm. Coloración dorsal azul

metálica, ventralmente con reflejos verdes.

Glosa con dos setas lateroapicales; borde an-

terior levemente cóncavo, ángulos anteriores

muy marcados; mentón sin setas, con diente

largo, poco más corto que los epilobos. An-

tenas con antenitos aplanados de contorno

subredondeado, con setas sólo lateraloapi-

cales. Ojos subredondeados, más globosos

que en C. convexus; borde posterior curvo y

oblicuo, borde anterior subcircular, con región

basal más angosta centralmente. Pronoto (Fig.

21) transversal (l/a = 0,64); superficie dorsal

convexa; ángulo anterior aplanado, más pro-

nunciado que en C. convexus; borde posterior

recto; epipleura ancha, no angostada en el

medio; márgenes angostos, no ensanchados

hacia atrás, con 14, 15 setas separadas entre sí,

ocupan los 3/4 anteriores del pronoto; foseta

posterior con una seta; ángulos redondeados.

Prosterno con gran cantidad de setas distribui-

das en los dos tercios posteriores; apófisis

prosternal larga, como en C. convexus. Elitros

convexos, de bordes paralelos (l/a = 2,94; con

estrías apenas marcadas; canaleta apenas per-

ceptible; interestría 3 con dos setas apicales;

estría 7 sin setas; estría 8 con 30, 31 setas, no

paralela a la lateral y poco separada de ésta;

interestría 9 plana, poco ensanchada en el ter-

cio apical; serie lateral con 13 setas muy

separadas entre sí en la región central y apical.

Protibia con borde externo apenas sinuoso y

ensanchado; espolón tibial alcanzando la mi-

tad del protarsito 2; protarsitos muy expandi-

102 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figuras 41-59: Figuras 41-54, lóbulos medios (a = ápice; la = lóbulo apical; pc = pieza copulatriz) de: 41-42, Cnemalobus

convexus; 45-46, C. nuria; 45-46, C. pegnai; 47-48, C. reichardti, 49-50, C. cylindricus, 51-52, C. cyaneus, 53-54, C. sub-

striatus;, figs. 55-59, genitales femeninos (be = bursa de la espermateca; e = espermateca; es = estilo; gl = glándula esper-

matecal) de: 55, C. convexus; 56, C. nuria; 57, C. cylindricus, 58, C. cyaneus, 59, C. substriatus.

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 13

dos externamente, l casi tan ancho como

largo, con dos setas laterales (como en Fig.

17), y una hilera de setas ventrolaterales

(como en Fig. 18); 2 y 3 dos veces más anchos

que largos, con una seta dorsolateral. Genital

(Figs. 43, 44) con lóbulo medio delgado, de

ápice corto; lígula derecha ancha, larga; saco

interno la mitad de largo que la longitud del

lóbulo medio no ensanchado; sin lóbulos

basales y con lóbulo apical recto, más corto

que la pieza copulatríz; pieza copulatriz cilín-

drica, grande.

Alotipo. Largo: 14,62 mm. Pronoto l/a =

0,66; élitros l/a = 2,89. Setas: mentón con

dos; pronoto con 18, 21; estría 8 con 25, 27;

serie lateral con 13, 19. Espolón tibial largo,

alcanzando la base del protarsito 4; protarsitos

2-3 con una seta ventrolateral. Genital (Fig.

56) con espermateca corta y curva; bursa de la

espermateca corta (largo menor a dos veces el

ancho), distancia entre bursa y ducto común

larga; ducto común largo, sin ampolla; glán-

dula espermatecal ovalada y alargada; estilos

largos y curvos, de ápice ancho.

Variación intraespecífica. Largo: 13,41-

17,48 mm. Pronoto l/a = 0,64-0,72; élitro l/a

= 2,60-3,00. Setas: mentón con o sin; pronoto

con 14-21; interestría 3 con 1-3 tres apicales;

estría 8 con 25-33; serie lateral con 13-19.

Notas comparativas. Esta especie comparte

con C. convexus el poseer la apófisis proster-

nal alargada, diferenciándose por la coloración

dorsal y menor cantidad de setas en pronoto y

serie lateral del élitro.

Distribución. Los ejemplares capturados

fueron hallados en la región chilena de Co-

quimbo (Fig. 60), en la zona seca del distrito

Coquimbano de la provincia biogeográfica del

Desierto (Cabrera y Willink, 1980).

Etimología. La palabra nuria, de origen

árabe, significa "azul" coloración que posee la

especie en su faz dorsal. ,

Material examinado. Holotipo SÍ, Chile

Tongoy Guanaqueros, 27-IX-1952 (MHNS).

Alotípo Y , mismos datos que el holotipo. Pa-

ratipos. CHILE. COQUIMBO: 28d 399

Guanaqueros, 27-IX-1952 (MHNS, MLP);

2838 399 28-IX-1952 (MHNS, MACN,

MLP, IADIZA); 19 Tongoy, 3-XI1-1975, col.

Arriagada (MHNS).

CNEMALOBUS PEGNAI

(Négre 1973) nov. comb.

(Figs. 8, 9, 22, 36, 45, 46)

Cnemacanthus pegnal Négre, 1973: 231.

Redescripción. Macho (Fig. 36), largo:

19,79 mm. Coloración de cabeza, protórax y

base del cuerpo negra, con reflejos azules;

élitros verde esmeralda: patas castaño oscuras.

Glosa sin setas, con borde anterior recto; men-

tón con dos setas, con diente cortos llegando

hasta la mitad de los epilobos. Antenas con

antenitos aplanados y de contorno subredon-

deado, con setas sólo lateroapicales. Ojos

poco globosos, borde anterior y posterior obli-

cuos; angostados en la base. Pronoto (Fig. 22)

transversal (l/a = 0,68); superficie dorsal muy

convexa; ángulos anteriores proyectados

hacia adelante, aplanados; borde posterior

recto; epipleura ancha, no angostada en el

medio; márgenes angostos, no ensanchados

hacia atrás, con 35, 39 setas que llegan hasta

el ápice; foseta posterior con una seta; ángulos

posteriores redondeados. Prosterno con gran

cantidad de setas (Fig. 8), como en C. con-

vexus, apófisis prosternal larga (Fig. 9). Me-

tasterno y metepímero con setas. Elitros

convexos, anchos (l/a = 2,47) de bordes

paralelos; estriados; canaleta no más profunda

que las restantes estrías; interestría 3 con una,

dos setas apicales: estría 7 sin setas; estría 8

subparalela a la lateral en la región central del

élitro, con 42 setas; interestría 9 levemente

convexa, no ensanchada en el ápice, pero muy

ancha desde el tercio anterior; serie lateral con

63 setas, que dan la apariencia de ser dos se-

ries. Protibia con borde externo sinuoso;

espolón tibial ancho, alcanzando la base del

protarsito 3; protarsitos expandidos en el ápice

externo, 1 más largo que ancho, con una seta

lateral (como en Fig. 16) y una hilera de setas

ventrolaterales (como en Fig. 18); 2 y 3 menos

del doble de ancho que largo, con una seta

dorsolateral. Genital (Figs. 45, 46) con lóbulo

14 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

medio delgado, levemente ensanchado en el

tercio apical, de ápice corto; lígula derecha

ancha y corta; saco interno tan largo como la

mitad de la longitud del lóbulo medio y más

ancho que éste en la región media, formando

una bolsa voluminosa; lóbulos basales ausen-

tes; lóbulo apical más corto que la pieza copu-

latriz, ancho y recto, pieza copulatriz

cilíndrica, grande.

W C. convexus

A C. pegnai

o C. nuria

* C. substriatus

A C. reichardti

e C.obscurus

o C. sulciferus

Notas comparativas. C. pegnai comparte con

C. convexus y C. nuria la conformación del

edeago, pubescencia antenal y prosternal que

los distinguen del resto de las especies del

género. Se diferencia de éstas dos especies

por la estriación elitral, coloración dorsal, pre-

sencia de setas en el metaepímero y ancho del

élitro y protórax.

C.cyaneus

C. montanus

C. pulchellus

C. piceus

C.cylindricus

C. germaini

Figuras 60-61: Distribución de: Fig. 60: Cnemalobus convexus, C. pegnai, C. nuria, C. substriatus, C. reichardti, C. obscu-

rus y C. sulciferus; Fig. 61: C. cyaneus, C. montanus, C. pulchellus, C. piceus, C. cylindricus, C. germaini y C. striatipen-

nis.

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 15

Distribución. Esta especie ha sido encontrada

en la región chilena de Coquimbo (Fig. 60), en

lugares arenosos (Négre, 1973) de la provin-

cia biogeográfica del Desierto (Cabrera y

Willink, 1980).

Material examinado. CHILE. CO-

QUIMBO: 1d Bosque Ñague, I-XI-1976, col.

D. Jackson S. (MHNS).

CNEMALOBUS REICHARDTI sp. nov.

(Figs. 23, 37, 47, 48, 60)

Cnemalobus striatus Putzeys, 1868: 369 (non

Waterhouse, 1841); Germain, 1901: 183; Ger-

mano mde 3:

Odontoscelis striatus: Philippi, 1887: 21.

Observaciones. Esta especie fue identificada

por Putzeys (1868) como Cnemalobus

striatus, haciendo notar que presentaba dife-

rencias con la especie descrita por Water-

house.

Descripción. Macho (Fig. 37). largo: 22,16

mm. Coloración negra. Glosa con dos setas

lateroapicales, borde anterior levemente cón-

cavo, ángulos anteriores marcados; mentón

con dos setas, diente largo, apenas más corto

que los epilobos. Antenas con antenitos apla-

nados de contorno subredondeado, setas largas

ubicadas en toda la extensión de los bordes

laterales y la región apical (como en Fig. 7).

Ojos globosos de base angosta, con borde an-

terior curvo y posterior oblicuo. Pronoto (Fig.

23) transversal (l/a 0,76); superficie dorsal

poco convexa; borde posterior recto;

epipleura angosta centralmente; márgenes sub-

paralelos hasta el tercio posterior, angostos y

no ensanchados hacia atrás; 22, 24 setas que

ocupan toda la longitud del margen; foseta

posterior con dos setas; ángulos posteriores re-

dondeados. Prosterno con pocas setas dis-

tribuidas en la mitad posterior de la apófisis

prosternal; apófisis prosternal corta. Elitros

con superficie dorsal plana, de bordes sub-

paralelos, ensanchados hacia atrás en los dos

tercios posteriores (l/a = 3,24); estriados; ca-

naleta marcada; interestría 3 con una, dos

setas apicales; estría 7 sin setas; estría 8 con

38, 39 setas, no paralela a la lateral separán-

dose progresivamente hacia el ápice; estría 9

basalmente recurvada y unida a la 5, formando

un pequeño "callo humeral"; interestría 9 leve-

mente convexa, ensanchada progresivamente

hacia el ápice; serie lateral con 17, 20 setas.

Protibia anterior con margen externo poco

sinuoso, no engrosado en el medio; espolón

tibial ancho alcanzando la base del protarsito

3; protarsitos muy expandidos en el ápice ex-

terno, 1 tan ancho como largo, con dos setas

laterales (como en Fig. 17) y un grupo desor-

denado de setas ventrolaterales (como en Fig.

19); 2 y 3 del doble de ancho que largo; pro-

tarsitos 2 y 3 con una seta dorsolateral. Geni-

tal (Figs. 47-48) con lóbulo medio muy ancho,

de ápice largo y ancho; lígula derecha ancha,

corta; saco interno tan largo como la mitad de

la longitud del lóbulo medio, más ancho que

éste; lóbulos basales ausentes; lóbulo apical

corto y redondeado, cuya base es mayor que el

largo y no se encuentra claramente separada

de la parte media del saco interno; pieza copu-

latriz cilíndrica, grande.

Variación intraespecífica. Largo: 19,44-

22,16 mm. Pronoto l/a = 0,56-0,74; élitro

l/a= 2,98-3,50. Setas: pronoto con 19-24; in-

terestría 3 con 1-2 apicales o sin ellas; estría 6

con 29-39; serie lateral con 15-20.

Notas comparativas. Esta especie se asemeja

mucho por el edeago a las especies descritas

anteriormente y se diferencia de éstas por la

pilosidad de las antenas, la presencia de un

grupo desordenado de setas en el protarsito 1

del macho, presencia de "callo humeral" en la

estría 8 y por el ancho del lóbulo medio.

Distribución. Los ejemplares estudiados no

poseen más referencia de localidad que Chile.

Sin embargo Putzeys (1868) y Germain (1901)

la citan para Santa Rosa, Illapel y Choapa, en

la región del Norte Chico (Fig. 60).

Etimología. El nombre de esta especie está

dedicado a Hans Reichardt por sus aportes al

conocimiento de los Carabidae neotropicales.

Material examinado. Holotipo: 19 CHILE

(MHNS); Paratipo: Y mismos datos que el

holotipo.

16 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

CNEMALOBUS CYLINDRICUS sp. nov.

(Figs. 7, 24, 38, 49, 50, 57, 61)

Descripción. —Holotipo macho (Fig. 38),

largo: 18,54 mm. Coloración negra. Glosa

con dos setas lateroapicales, borde anterior

cóncavo; mentón sin setas, con diente un poco

más corto que los epilobos. Antena con an-

tenitos aplanados de contorno subredondeado,

con setas ubicadas lateral y dorsalmente como

en C. reichardti (Fig. 7). Ojos muy globosos

y salientes, de base estrecha; borde anterior y

posterior subcirculares. Pronoto (Fig. 24)

transversal (l/a = 0,70); superficie dorsal con-

vexa; borde posterior recto; epipleura an-

gostada centralmente; márgenes angostos, no

ensanchados hacia atrás, con 13, 15 setas que

sobrepasan la mitad del protórax; foseta poste-

rior con dos setas; ángulos posteriores poco

marcados. Prosterno con pocas setas agru-

padas principalmente en la parte posterior, y

seis O siete en la región central; apófisis

prosternal corta. Elitros convexos, de bordes

paralelos (l/a = 3,23); estrías apenas in-

sinuadas; canaleta levemente marcada en el

tercio apical; interestría 3 con dos setas api-

cales; estría 7 sin setas; estría 8 no paralela a

lateral, con 35, 36 setas; en su base la estría 8

se recurva llega hasta la quinta formando un

pequeño callo humeral"; interestría 9 leve-

mente convexa, ancha en el ápice; serie lateral

con 12, 15 setas muy separadas entre si. Proti-

bia no ensanchada centralmente; espolón tibial

no sobrepasa la mitad del protarsito 2; protar-

sitos expandidos externamente, 1 menos ancho

que largo, con dos setas laterales (como en

Fig. 17) y un grupo desordenado de setas ven-

trolaterales (como en Fig. 19); 2 y 3 una vez y

media más anchos que largos, con una seta

dorsolateral. Genital (Figs. 49, 50) con lóbulo

medio ancho y arqueado, de ápice largo y an-

cho; lígula derecha ancha, angostada abrup-

tamente en su parte apical; saco interno dos

tercios del largo del lóbulo medio, ensanchado

en la parte media y apical; lóbulos basales

ausentes; lóbulo apical ancho y recto; pieza

copulatriz cilíndrica, grande.

Alotipo: Largo: 15,67 mm. Pronoto l/a =

0,68; élitros l/a = 2,81. Setas: mentón con un

par; protórax con 10, 11; foseta posterior con

una; interestría 3 con dos apicales: estría 8 con

26, 38; serie lateral con 9, 19. Espolón tibial

alcanzando la mitad del protarsito 3; protarsi-

tos poco expandidos, 2 y 3 con una seta ven-

trolateral. Genital (Fig. 57) con espermateca

corta y curva; bursa de la espermateca corta

(largo menor a dos veces el ancho); distancia

entre bursa y ducto común larga; ducto común

largo, con ampolla; glándula espermatecal

alargada; estilos gruesos, poco arqueados, de

ápice ancho.

Variación específica.

mm. Pronoto l/a = 0,67-0,70; élitros l/a =

2,81-3,39. Setas: pronoto con 10-21; foseta

posterior con una o dos; interestría 3 con una

o dos apicales; estría 8 con 25-38; serie lateral

con 9-18.

Largo: 14,87-22,31

Notas comparativas. Esta especie comparte

sólo con C. reichardti la presencia de "callo

humeral" y la disposición de las setas ventro-

laterales del primer tarsito del macho. Se di-

ferencia por la ausencia de estrías elitrales,

convexidad del cuerpo y forma del saco in-

terno.

Distribución. Los ejemplares capturados

fueron hallados en la regiones chilenas de Co-

quimbo y Valparaíso (Fig. 61).

Etimología. El nombre específico de esta

especie hace alusión a la forma cilíndrica del

cuerpo.

Material examinado., Holotipo d', Chile Co-

quimbo, Sur de Puerto Oscuro 26-IX-1980,

col. L. Peña (MHNS). Alotipo Y mismos

datos que el holotipo. Paratipos. CHILE.

COQUIMBO: 18 Canela, Combarbala 18-IX-

1971, col. L. Peña (INCO); 288 289

Lagunillas, 4-1X-1947, col. L. Peña (MHNS);

SINS A Puerto Oscuro, 9-X-1977

(IADIZA, MLP); 288 299

Puerto Oscuro, 1X-1980, col. L. Peña (MLP);

633 198 Sur de Puerto Oscuro, 26-IX-1980, |

col. L. Peña (IADIZA; MACN, MHNS); 1d

Quilitapia, 2-XI1-1970, col. J. Solervicens

(INCO); 19 Talinay, La Serena, 13-X-1976,

col. J. Solervicens (INCO); 19 Guanaqueros,

25-X-1992, col. S. Roig (IADIZA). VAL-

Norte de |

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 17

PARAISO: 19 Quillota, XI-1897 (MHNS).

SIN DATOS DE LOCALIDAD: 288

(IADIZA).

Material no considerado tipo: 19 Co-

quimbo (paralectotipo de C. convexus, nro.

2706) (MHNS).

CNEMALOBUS CYANEUS (Brullé 1834)

(ias. 2 Dl OO)

Cnemacanthus cyaneus Brullé, 1834: 373.

Odontoscelis cyaneus: Waterhouse, 1841:

356; Philippi, 1887: 20.

Cnemalobus cyaneus: Philippi, 1864: 461;

Putzeys, 1868: 367; Solier, 1849: 194; Ger-

main, 1901: 186; Csiki, 1928: 15; Black-

welder, 1944: 29.

Cnemalobus abbreviatus Putzeys, 1968: 366.

Scelodontis cyanea: Gemminger y Harold,

1868: 244.

Cnemacanthus abbreviatus: Csiki, 1929: 15;

Blackwelder, 1944: 28.

Cnemalobus putzeysi Csiki, 1928: 15; Black-

welder, 1944: 28.

Redescripción. Macho (Fig. 39), largo:

16,43 mm. Coloración dorsal negra con refle-

jos azules, ventralmente pardo oscuro. Glosa

con dos setas lateroapicales, con borde ante-

rior sinuoso y ángulos anteriores rectos: men-

tón sin setas, con dientes más corto que los

epilobos. Antenas con antenitos aplanados de

contorno subredondeado; setas sólo lateroapi-

cales. Ojos poco globosos, con base acumi-

nada; borde anterior y posterior rectos.

Pronoto (Fig. 25) transversal (l/a = 0,60); su-

perficie dorsal convexa; borde posterior emar-

ginado centralmente; epipleura muy ancha, no

angostada en el medio; márgenes anchos, en-

sanchados y aplanados en el cuarto posterior,

formando un alerón; 15, 16 setas distribuidas

en los tres cuartos anteriores del margen;

foseta posterior con una seta; ángulos poste-

riores marcados. Prosterno con pocas setas,

ubicadas en los márgenes de la mitad posterior

de la apófisis prosternal; apófisis prosternal

corta. Elitros convexos, de bordes sub-

paralelos (l/a = 2,69); estrías apenas marcadas;

interestrías levemente convexas; sin canaleta;

interestría 3 con una, dos setas apicales; estría

7 con una, dos setas apicales; estría 8 no

paralela a la lateral, con 34, 38 setas; interes-

tría 9 levemente convexa, muy ensanchada en

el tercio apical; serie lateral con 17, 19 setas.

Protibia no engrosada centralmente; espolón

tibial corto, alcanzando la base del protarsito

2; protarsitos expandidos en el ápice, 1 tan an-

cho como largo, con una seta lateral (como en

Fig. 16) y un grupo desordenado de setas ven-

trolaterales (como en Fig. 19); 2 y 3 más del

doble de ancho que largo, con una seta dorso-

lateral. Genital (Figs. 51, 52) con lóbulo

medio delgado, ensanchado en el medio, de

ápice corto y redondeado; lígula derecha

ancha y corta, no adelgazada en el ápice; saco

interno tan ancho y largo como el lóbulo

medio; lóbulo basal (1) ausente, (2) grande;

lóbulo apical recto y ancho, angostado en la

base, más largo que la pieza copulatriz; pieza

copulatriz pequeña y espatulada.

Hembra. Largo: 16,43 mm. Pronoto l/a =

0,52; élitros l/a, = 2,81. Setas: pronoto con

16, 17; estría 7 con una apical; estria 8 con 31;

serie lateral con 23. Espolón tíbial largo y an-

cho, alcanzando el protarsito 4; protarsito 2 y

3 con dos setas ventrolaterales. Genital (Fig.

58) con espermateca larga y curva; bursa de la

espermateca larga (más de cuatro veces más

larga que ancha); distancia entre bursa y ducto

común corta; ducto común muy corto, sin am-

polla; glándula espermatecal piriforme; estilos

cortos y poco curvos, de ápice romo.

Variación intraespecífica. largo: 15,67-17,79

mm. Coloración totalmente negra o con refle-

jos azul metálicos. Pronoto l/a = 0,58-0,62;

élitros l/a = 2,72-2,78. Setas: pronoto con 15-

17: interestría 3 con 1-2 apicales; estría 7 con

1-2 apicales; estría 8 con 29-38; serie lateral

con 17-24.

Notas comparativas. Esta especie posee la

pieza copulatriz muy semejante a las especies

argentinas y se diferencia de éstas por la

forma de las antenas y del lóbulo apical del

saco interno.

Distribución. Se lo ha encontrado sobre du-

nas marinas, en la región chilena de Val-

paraíso (Fig. 61).

18 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Material examinado. CHILE. VALPARATI-

SO: 19 Algarrobo, XI-1970, col. Ramirez

(INCO); 189 Con Con, IX-1925, col. A. Faz

(MLP); 29 (MHNS); 19 Quintero, 25-X-

1963, col. Solervicens (MHNS); 1d. 9- X-

1963 (MHNS); 19 (sobre dunas),

28-II11-1981, col. M. Elgueta (MHNS); 389

Viña del Mar, 18-1-1898 (MHNS). Sin locali-

dad precisa: 12 (MHNS); 18 col. C. S. Reed

(MACN).

CNEMALOBUS SUBSTRIATUS

(Waterhonse 1841)

(Figs. 26, 40, 53, 54, 59, 60)

Odontoscelis substriatus Waterhouse, 1841:

30% lino. 1

Scelodontis substriata: Gemminger y Harold,

1868: 244.

Cnemalobus substriatus: Bruch, 1911: 162.

Cnemacanthus substriatus: Csiki, 1928: 16;

Blackwelder, 1944: 28.

Observaciones. Esta especie fue citada por

Bruch (1911) para Argentina, lo que pro-

bablemente sea un error de identificación.

Redescripción. Holotipo hembra, largo:

15,22 mm. Coloración negra. Glosa con dos

setas mediolaterales, borde anterior recto, án-

gulos anteriores redondeados; mentón con dos

setas y diente largo. Antenas con antenitos

subredondeados y aplanados, con setas

lateroapicales. Ojos poco globosos, acumi-

nados; borde anterior redondeado y posterior

oblicuo. Pronoto (Fig. 26) transversal (l/a

0,62); superficie dorsal convexa; borde poste-

rior escotado centralmente; epipleura ancha,

levemente angostada en el medio; bordes late-

rales anchos, apenas ensanchados hacia atrás,

con 12, 15 setas que llegan hasta el ápice;

foseta posterior con una seta; ángulos poste-

riores redondeados. Prosterno con pocas setas

agrupadas principalmente en los bordes de la

apófisis; apófísis prosternal corta. Elitros

convexos, de bordes paralelos (l/a = 3,00);

estrías difusas; canaleta marcada en el tercio

apícal; interestría 3 sin setas; estría 7 con dos,

tres setas basales y cuatro, cinco apicales;

estría 8 no paralela a la lateral, separada de

ésta en el tercio apical, con 23, 26 setas; inter-

estría 9 levemente convexa, ancha en el tercio

apical; serie lateral con 15 setas. Protibia no

ensanchada centralmente; espolón tibial llega

a la base del protarsíto 4; protarsitos no en-

sanchados, 2 y 3 con dos setas ventrolaterales.

Genital (Fig. 59) con espermateca larga y

curva; bursa de la espermateca muy larga y

curva; distancia entre bursa y ducto común

larga; ducto común largo, sin ampolla; glán-

dula espermatecal alargada; estilos gruesos,

poco arqueados, ápice delgado de punta

aguzada.

Macho (Fig. 40), largo: 10,58 mm. Pronoto

l/a = 0,63; élitros l/a = 3,00. Setas: pronoto

con 12, 14; estria 7 con dos basales y tres api-

cales; estría 8 con 28, 29; serie lateral con 13.

Ojos muy globosos, acuminados en la base;

redondeados adelante y oblicuos atrás.

Espolón tibial corto, alcanzando la mitad pro-

tarsito 2; protarsitos expandidos lateralmente,

l tan ancho como largo, con una seta lateral

(como en Fig. 16) y un grupo desordenado de

setas ventrolaterales (como en Fig. 19); 2 y 3

una vez y media más ancho que largo, con una

seta dorsolateral. Genital (Figs. 53, 54) con

lóbulo medio delgado, de ápice largo y del-

gado; lígula derecha ancha, angostada en su

parte apical; saco interno tan largo y ancho

como el lóbulo medio; lóbulo basal (1)

ausente, (2) ancho; lóbulo apícal ancho y recto

de base ancha; pieza copulatriz espatulada,

pequeña.

Variación intraespecífica. Largo: 10,58-

15,22 mm. Pronoto l/a = 0,60-0,64; élitros

2,95-3,00. Setas: pronoto con 11-21; estría 7

con 1-3 basales y 3-5 apicales; estría 8 con 12-

31; serie lateral con 13-23.

Notas comparativas. Esta especie es muy se-

mejante a C. cyaneus y se diferencia de ésta

por coloración y forma del lóbulo apical del

saco interno.

Distribución. Ocupa la costa de la zona cen-

tral de Chile, en la región de Valparaíso (Flg.

60).

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 19

Materíal examinado. —Holotípo Y, Val- CHILE. VALPARAISO: 2d99' Quintay, 11-

paraíso, C. Darwin Esq. (BMNH). VIII-1968, col. L. Peña (INCO, MLP); 3

Q 9 El Yali, 1/3-X1-1975 (INCO, MLP).

Figuras 62-68: Machos de: 62, Cnemalobus obscurus; 63, C. germani; 64, C. striatipennis; 65, C. montanus; 66, C. piceus;

67, C. pulchellus; 68, C. sulciferus.

20 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

CNEMALOBUS OBSCURUS (Brullé 1834)

(Figs. 27, 60, 62, 69-72, 78)

Cnemacanthus obscurus Brullé, 1834: 337.

Barypus aterrimus Chaudoir, 1835: 445.

Odontoscelis tentyrioides Curtis, 1839: 197;

Waterhouse, 1841: 356.

Cnemalobus obscurus: Solier, 1849: 193;

Putzeys, 1868: 367; Germain, 1901: 194;

IOIMESS

Scelodontis tentyrioides:

Harold, 1868: 244.

Odontoscelis obscurus: Philippi, 1887: 20.

Gemminger y

Redescripción. Macho (Fig. 62). largo:

20,05 mm. Coloración negra. Glosa con dos

setas en la base del tercio apical, laterales,

borde anterior cóncavo, ángulos anteriores

marcados; mentón con dos setas; diente tan

largo como los epilobos. Antenas con anteni-

tos aplanados y subrectangulares, setas sólo

lateroapicales. Ojos poco globosos, acumi-

nados en la base; borde anterior recto y poste-

rior oblicuo. Pronoto (Fig. 27) transversal (l/a

= 0,66); superficie dorsal poco convexa; borde

posterior poco escotado; epipleura ancha, an-

gostada en la región media; márgenes poco an-

chos, levemente ensanchados hacia atrás, con

17 setas, distribuidas en los dos tercios ante-

riores; foseta posterior con una seta; ángulos

posteriores redondeados. Prosterno con pocas

setas, en los márgenes de la apófisis proster-

nal; apofísis prosternal corta. Elitros de bor-

des subparalelos, ensanchados apenas en el

medio (l/a 3,08); sin estrías; canaleta poco

profunda al comienzo y marcada en el tercio

apical; interestría 3 con una seta apical; estría

7 con dos, tres, setas basales y tres, cuatro api-

cales; estría 8 no paralela a la lateral, con 32,

35 setas; interestría 9 levemente convexa y

muy ancha en el tercio apical; serie lateral con

11, 15 setas. Protibia no ensanchada central-

mente; espolón tibial largo y delgado, alcan-

zando la base del protarsito 3; protarsitos

expandidos en el ápice, anchos, 1 casi tan an-

cho como largo, con una seta lateral (como en

Fig. 16) y un grupo desordenado de setas ven-

trolaterales (como en Fig. 19); 2 y 3 más del

doble de ancho que largo, con una seta dorso-

lateral. Genital (Figs. 69-72): lóbulo medio

arqueado y grueso, no ensanchado, con ápice

ancho y corto; lígula derecha ancha y corta,

adelgazada en el ápice; saco interno tan largo

como los dos tercios de la longitud del lóbulo

medio; lóbulo basal (1) grande, no dividido,

(2) ausente; lóbulo apical largo, cubre la pieza

copulatriz; pieza copulatriz espatulada,

pequeña.

Hembra Largo: 20,95 mm. Pronoto l/a =

0,66; élitros l/a = 3,07. Setas: estría 7 con dos

basales y una apical; estría 8 con 38, 41; serie

lateral con 18, 22. Espolón tibial largo y del-

gado, alcanzando la base del protarsito 4; pro-

tarsitos no ensanchados en el ápice, 2 y 3 con

dos setas ventrolaterales. Genital (Fig. 79)

con espermateca larga y curva; bursa de la es-

permateca larga (largo mucho mayor a dos ve-

ces el ancho) con ápice en "zig-zag"; distancia

entre bursa y ducto común corta; ducto común

corto, sin ampolla; glándula espermatecal re-

donda y corta; estilos cortos poco curvados, de

ápice romo.

Variación intraespecífica. Largo: 16,48-

23,18 mm. Pronoto l/a = 0,63-0,75; élitro l/a

= 2,66-3,20. Setas: pronoto con 15-23; foseta

posterior con 1-3; interestría 3 con una apical

o sin ella; estría 7 con 1-4 basales y 1-4 api-

cales; estría 8 con 25-55 setas; serie lateral

con 11-29. Lóbulo apical recto (Figs. 69, 70)

o curvo (Figs. 71, 72). Estilos cortos, poco

curvados y de ápice romo, o largos, curvos y

de ápice aguzado.

Notas comparativas. Esta especie posee el

saco interno muy semejante a C. germaini y C.

striatipennis y se diferencia de éstas por la

forma del protórax.

Distribución. Se la encuentra en las zonas

montañosas de las regiones chilenas de Val-

paraíso, Metropolitana de Santiago, del Liber-

tador General Bdo O'Higgins, Maule y Bío

Bío (Fig. 60).

Material examinado. Holotípo Y, de Odon-

tocelis tentyrioides, Valparaíso (BMNH).

CHILE. VALPARAISO: 18 cerca de Pe-

torca, Alicahue (MHNS); 19 IX-1924, col. A. |

Faz (MLP); 2 8d 1 Y Quilpué 1-1926, col.

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 21

Figuras 69-80: Figuras 69-77, lóbulo medio (a = ápice; la = lóbulo apical; lbl = lóbulo basal (1); pc = pieza copulatriz) de:

69-72, Cnemalobus obscurus; 73-75, C. germaint, 76-77, C. striatipennis; 78-80, genital femenino (be = bursa de la esper-

mateca; e = espermateca; es = estilo; gl = glándula espermatecal) de: 78, C. obscurus; 79, C. germaini; 80, C. striatipennis.

2) Rev. Chilena Ent. 21, 1994

A. Faz (MLP); 1 9 Con Con, 31-XII-1968,

col. J. Solervicens (INCO); 1 Y (MHNS); 1

g Cerro Aguila, Quillota, 12-X-1967, col.

Heymann (INCO); 1 Ud Viña del Mar, 1-I-

1952 (MHNS); 28d 2 Y Cerro El Roble

(Valp.), 30/31-IX-1976, col. L. Peña (CLP,

MHNS, MLP); 2 Y La Campana, 18-IX-

1974, col. Chavez (INCO); 1 Ud Tq. Recreo,

6-X-1963, col. J. Solervicens (MHNS).

METROPOLITANA DE SANTIAGO: 2 94

col. P. Germain (MHNS); 1 Ud Baños Colina,

14-V-1983, col. G. Arriagada (MHNS); 309

Cantillana, 3-XI-1981, col. M. Elgueta

(MHNS); 139 299 Cerro Roble Alto, 7/9-

XII-1980, col. Elgueta (MHNS); 2 dd

Colina, 3000 m s.n.m., 1-1892 (MHNS); 2 809

2 99 Cordillera de Santiago, col. Germain

(MHNS); 1 Y 1-1899 (MHNS); 4 9 El

Canelo XII-1976, col. L. Peña (CLP); 2 938

BO7SAcolL Peña (CLP): 1 O 1211977

(MLP); 139 19 15-11-1954 (MHNS)y; 1 Y

XI-1952, col. L. Peña (MHNS); 1 d 26-X-

1975, col. L. Peña (MHNS); 4 dd 30-XI-

1970 col. G. Barria y L. Alvarez (INCO); 2

dd 1% 28-1X-1970, col. G. Barria y L. Al-

varez (INCO); 1 Y 29-XII-1950, col. L. Peña

(MHNS); 1 Y 15-XI-1954, col. L. Peña

(MHNS); 1 Y 9-1-1971, col. F. Silva G.

(INCO); 1 9 XI-1954 (MHNS); 1 S El Man-

zano, 4-X-1970, col. J. Moroni (MHNS); 2

gg8 4-X-1970, col. G. Barria y L. Alvarez

INCO SOS MISMA MS:

Rore-MAVADIZA) 100 1 0) MENO83. col!

Peña (CLP); 1 US El Peumo, 19-1-1951, col.

Marb (MHNS); 1 SÍ 29-XII-1960, col. T.

Ramirez (MHNS); 3 99 La Obra, 18/23-XII-

1953, col. L. Peña (MHNS); 2 99 Lo Aguila

(MHNS); 1 S3 Pichi (Alhue), 6-8-XIl-1947,

col. Peña y Barros (INCO). LIBERTADOR

BERNARDO Q'HIGGINS: Colchagua 1 $ 2

QQ 3-11-1979, col. L. Peña (CLP). MAULE:

83d 7% Cordillera de Parral, Fundo Mal-

cho, XI-1956 (IADIZA); 1 3 Cordillera

Curicó (MHNS); 1 9 Plan (MHNS); 3dGd 4

99, Bullileo, 1-1979, col. L. Peña (CLP).

BIO BIO: 1 3d 1 Y Cordillera de Chillán

(MHNS); 1 8d 1 Y. Cordillera de Chillán

(MHNS). SIN DATOS DE LOCALIDAD: 1

g (MLP); 1d (MHNS).

CNEMALOBUS GERMAINI Putzeys 1868

(Elgs: 28, 61, 037139-73,.J9)

Cnemalobus germaini Putzeys, 1868: 365;

German: 19015185 1011153: Csiki 1928:

15; Blackwelder, 1944: 28.

Redescripción. Macho (Fig. 63), largo: 18,54

mm. Coloración negra. Glosa con dos setas

centrales en el ápice, borde anterior convexo y

ángulos anteriores romos; mentón con dos

setas, diente más corto que los epilobos. An-

tenas con antenitos aplanados y subrectangu-

lares, con setas lateroapicales. Ojos globosos,

borde anterior y posterior oblicuos. Pronoto

transversal (l/a = 0,59); superficie dorsal con-

vexa; de contorno subcircular (Fig. 28); borde

posterior levemente escotado; epipleura muy

ancha, no angostada en el medio; márgenes

anchos, un poco ensanchados hacia atrás, con

18, 21 setas, distribuidas en los dos tercios an-

teriores del margen; ángulos posteriores re-

dondeados, con 1, 2 setas en la foseta y una

tercera seta cercana a la foseta. Prosterno con

pocas setas, en los márgenes de la apófisis

prosternal; apófisis prosternal corta. Elitros

anchos y convexos (l/a = 2,91), de bordes sub-

paralelos, ensanchados hacia atrás; lisos; ca-

naleta muy profunda; interestría 3 con una seta

apical; estría 7 sin setas; estría 8 no paralela a

la lateral, con 31, 34 setas; interestría 9 muy

convexa y ancha en el tercio apical; serie la-

teral con 14, 15 setas. Protibia con cara ex-

terna curvada y ancha en la zona media;

espolón tibial corto y ancho, alcanzando la

base del protarsito 2; protarsitos expandidos

en el ápice, el 1 casi tan ancho como largo,

con una seta lateral (como en Fig. 16) y un

grupo desordenado de setas ventrolaterales

(como en Fig. 19); 2 y 3 menos del doble de

ancho que largo, con una seta dorsolateral.

Genital (Figs. 73-75) con lóbulo medio ar-

queado, no ensanchado; ápice largo y redon-

deado; lígula derecha ancha y cora,

adelgazada en el ápice; saco interno tan largo

como los dos tercios de la longitud del lóbulo

medio, no ensanchado; lóbulo basal (1) gran-

des no dividido, (2) ausente; lóbulo apical tan

largo como la pieza copulatriz, de base ancha;

pieza copulatriz espatulada.

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 23

Hembra. Largo: 19,44 mm. Pronoto l/a =

0,58; élitros l/a 2,66. Setas: pronoto con 20,

24; foseta posterior con tres; interestría 3 con

dos, cuatro apicales; estría 7 con una basal;

estría 8 con 32; serie lateral con 15, 19. Tibia

anterior muy ancha en el medio; espolón tibial

largo y ancho, muy curvado ventralmente, al-

canzando casi el protarsito 4; protarsitos poco

expandidos en el ápice, 2-3 con dos setas ven-

trolaterales. Genital (Fig. 79) espermateca

larga y curva; bursa de la espermateca larga

(más de dos veces más larga que ancha) y

ancha, sinuosa; distancia entre bursa y ducto

común corta; ducto común corto, sin ampolla;

glándula espermatecal redonda; estilos poco

curvados, con ápice romo.

Variación intraespecífica. Largo: 15,08-

21,17 mm. Pronoto l/a = 0,58-0.63; élitros l/a

= 2,66-2-92. Setas: pronoto con 15-27; foseta

posterior con 1-3; interestría 3 con 1-4 api-

cales; estría 7 con una basal o sin ella; estría 8

con 27-40; serie lateral con 12-23. Lóbulo

apical del saco interno puede rodear a la pieza

copulatriz ventralmente por la derecha (Figs.

75, 76) o ser recto y cubrirla dorsalmente

(Figs. 73, 74). Estilos cortos, poco curvados y

con ápice romo o largos, curvos y con ápice

aguzado.

Notas comparativas. Esta especie se diferen-

cia de aquéllas descritas anteriormente que

poseen la pieza copulatriz espatulada, por lo

profundo de la canaleta y ancho de la interes-

tría 9.

Distribución. Se encuentra en las regiones

chilenas de Maule, Bío Bío y Araucanía (Fig.

61), en la provincia biogeográfica Subantár-

tica, distrito del Bosque Caducifolio (Cabrera

y Willink, 1980).

Materíal examinado. CHILE. MAULE: 1

GQ Cordillera Costa, 1-1901 (MHNS). BIO

BIO: 1 Ud 11-1984, col. L. Peña (IADIZA); 1

SÍ Atacalco, 23-XI-1951, col. L. Peña

(MHNS); 1 SÍ El Marchant, 1-1978, col. L.

Peña (IADIZA); 1 Y Fundo El Castillo, 22-

11-1969, col. L. Alfaro (MHNS); 1 Y

Chillán, 1893 (MHNS); 2 893 2 49 Inver-

nada, Cordillera de Chillán, X/XII-1969, col.

Ocare (INCO); 1 Y XI-1976, col. L. Peña

(CLP); 2388 4% Las Trancas, Chillán, 1/I1-

1974, col. L. Peña (CLP, MLP, INCO); 2 89

3 Y 1/11-1976, col. L. Peña (CLP); 1 3d 7

QQ XI-1978, col. L.Peña (CLP, IADIZA); 1

3 4 99 I-1980, col. L. Peña (CLP); 1 d IV-

1980, col. L. Peña (CLP); 2 Ud gd 8 Km al E de

Recinto, VIII Región (Bío Bío), 16-X1-1987,

col. E. Maury (MACN).ARAUCANIA: Cura-

cautín, 1 9 Termas de Río Blanco, 29/31-IHI-

1954, 1050-1500 m.s.n.m., col. L. Peña

(MHNS). SIN DATOS DE LOCALIDAD: 1

Q (nro. 574) (MHNS).

CNEMALOBUS STRIATIPENNIS sp. nov.

(Figs. 29, 61, 64, 76, 77, 80)

Descripción. Holotipo macho (Fig. 64),

largo: 18,09 mm. Coloración negra. Glosa

con dos setas lateroapicales, borde anterior

recto, ángulos anteriores romos; mentón con

dos setas, con diente corto. Antenas con an-

tenitos subrectangulares, con setas lateroapi-

cales. Ojos globosos; borde anterior

redondeado y posterior oblicuo. Pronoto (Fig.

29) transversal (l/a = 0,62); superficie dorsal

poco convexa; borde posterior levemente cón-

cavo; epipleura muy ancha; márgenes anchos,

aplanados y ensanchados hacia atrás, con 17,

19 setas que llegan hasta el tercio apical;

foseta posterior con una seta; ángulos poste-

riores rectos. Prosterno con pocas setas, que

ocupan el contorno de la apófisis prosternal,

apófisis prosternal corta. Elitros anchos, de

bordes subparalelos (l/a = 2,67); con estrías;

canaleta muy profunda; interestría 3 con tres

cuatro setas apicales; estría 7 con una seta ba-

sal; estría 8 no paralela a la lateral, con 39, 40

setas; interestría 9 muy ancha y convexa en el

tercio apical; serie lateral con 20, 21 setas.

Protibia no ensanchada centralmente: espolón

tibial corto y ancho, alcanzando la mitad del

protarsito 2; protarsitos expandidos en el

ápice, l menos ancho que largo, con una seta

lateral (como en Fig. 16) y un grupo desorde-

nado de setas ventrolaterales (como en Fig.

19); 2 y 3 menos del doble de ancho que largo,

con una seta dorsolateral. Genital (Figs. 76,

77) con lóbulo medio levemente arqueado;

ápice corto; lígula derecha ancha, no an-

gostada en el ápice; saco interno dos tercios de

24 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

la longitud del lóbulo medio, de igual ancho

en todo su largo; lóbulo basal (1) grande, no

dividido, (2) ausente; lóbulo apical tan largo

como la pieza copulatriz; pieza copulatriz

espatulada, pequeña.

Alotipo Largo: 17,94 mm. Pronoto l/a = 0,60;

élitros l/a = 2,68. Setas: pronoto con 13, 14;

interestría 3 con dos, cuatro apicales, interes-

tría 6 con una basal; estría 7 con una, tres

basales; estría 8 con 35, 41; serie lateral con

19, 24. Protibia ensanchada en el medio;

espolón tibial largo y ancho, alcanzando la mi-

tad del protarsito 3; protarsitos poco expandi-

dos, 2 y 3 con dos setas ventrolaterales.

Genital (Fig. 80) espermateca muy larga y

curva; bursa de la espermateca larga (largo

mayor a dos veces el ancho); distancia entre

bursa y ducto común larga; ducto común muy

corto, sin ampolla; glándula espermatecal piri-

forme; estilos delgados y curvos, ápice con

punta aguzada.

Variación intraespecífica. Largo: 16,34-

20,36 mm. Pronoto l/a = 0,60-0,63; élitros l/a

= 2,40-2,84. Setas: pronoto con 11-20; inter-

estría 3 con 2-4 apicales, interestría 6 con una

basal o sin ella; estría 7 con 1-3 apicales y con

una basal o sin ella; estría 8 con 29-46; serie

lateral con 16-29.

Notas comparativas. Esta especie es muy se-

mejante a C. germaini y se diferencia de ella

por la forma del saco interno y por la presen-

cla de estrías elitrales.

Distribución. Bosque mesófilo de Notho-

fagus dombeyi (coihue), entre los 1200 y 1500

m s.n.m., en la región del Maule (Fig. 61).

Materíal examinado. Holotipo SÍ, Talca,

Alto de Vilches, 1200 m s.n.m., 15-1-1984.col.

A. y S. Roig (MLP). Alotipo Y mismos da-

tos que el holotipo. Paratípos. CHILE.

MAULE: 1 U Alto de Vilches, XII-1975, col.

L. Peña (MHNS); 7338 2 99 1200 m s.n.m.,

15-1-1984, col. A. y S. Roig (IADIZA, MLP);

1 S 1280 m's:.n.m., 25/26=X1-1970, col. J.

Solervicens (INCO); 1 Y 499 10/16-XIl--

1976, col. L. Peña (MHNS); 5 8d 1 Y XI-

1989, col. J. Barriga (MACN); 2 dd 19 7-

VII1-1989, col. E. Maury (MLP, MACN).

CNEMALOBUS MONTANUS sp. nov.

(Figs. 30, 61, 65, 81, 82, 91)

Descripción. Holotipo macho (Fig. 65),

largo: 15,54 mm. Coloración negra. Glosa

sin setas, borde anterior recto y ángulo ante-

rior romo; mentón con dos setas, diente corto,

llegando hasta la mitad de los epilobos. An-

tenas con antenitos subrectangulares, setas

sólo laterales. Ojos globosos, acuminados en

la base; con borde anterior recto y posterior

oblicuo. Pronoto (Fig. 30) transversal (l/a

0,59; superficie dorsal poco convexa; borde

posterior poco escotado; epipleura ancha, no

angostada en el medio; márgenes anchos, en-

sanchados y aplanados hacia atrás, con 20, 21

setas que llegan hasta el tercio apical; foseta

posterior con una seta; ángulos posteriores re-

dondeados. Prosterno con pocas setas,

apófisis prosternal corta. Elitros planos dor-

salmente, con bordes subparalelos (l/a = 3,04);

lisos; canaleta levemente insinuada en el ter-

cio apical; interestría 3 sin setas; estría 7 con

tres setas apicales y una seta basal; estría 8 no

paralela a la lateral, con 30 y 31 setas; interes-

tría 9 levemente convexa y ensanchada en el

tercio apical; serie lateral con 14, 15 setas.

Protibia levemente ensanchada; espolón tibial

largo y ancho, alcanzando la base del protar-

sito 3; protarsitos expandidos en el ápice ex- |

terno, 1 tan ancho como largo, con una seta |

lateral (como en Fig. 16) y un conjunto desor- |

denado de setas ventrolaterales (como en Fig.

19); protarsitos 2 y 3 más del doble de ancho '

Genital |

(Figs. 81, 92) con lóbulo medio delgado y

que largo, con una seta dorsolateral.

levemente arqueado, de ápice angosto y corto; |

lígula derecha ancha y corta, adelgazada en el |

ápice; saco interno dos tercios de la longitud

del lóbulo medio y del mismo ancho que éste;

lóbulo basal (1) dividido; lóbulo basal (2) an-

cho; lóbulo apical largo, delgado y recto, con

base más ancha que la región media y apical;

pieza copulatriz espatulada, pequeña.

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 25

Figuras 81-94: Lóbulo medio (la = lóbulo apical; 1b1 = lóbulo basal (1); pc = pieza copulatriz) de: 81-82, Cnemalobus mon-

tanus, 83-84, C. piceus; 85-96, C. pulchellus; 87-90, C. sulciferus; 91-94, genital femenino (be = bursa de la espermateca;

€ = espermateca; es = estilo; gl = glándula espermatecal) de: 91, C. montanus; 92, C. piceus; 93, pulchellus; 94, C. sulcif-

erus.

26 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Alotipo Largo: 15,54 mm. Pronoto l/a = 0,61;

élitro l/a = 2,57. Setas: pronoto con 16, 20;

estría 7 con una basal, una central y dos api-

cales; estría 8 con 28, 29; serie lateral con

15,16. Protibia levemente ensanchada;

espolón tibial largo y ancho, alcanzando la mi-

tad del protarsito 4; protarsitos muy poco en-

sanchados, 2 y 3 con dos setas ventrolaterales.

Genital (Fig. 91) con espermateca larga y

curva; bursa de la espermateca larga (largo

mayor a dos veces el ancho); distancia entre

bursa y ducto común corta; ducto común

corto, sin ampolla; glándula espermatecal re-

donda y corta; estilos cortos y curvos, de ápice

redondeado.

Variación intraespecífica. Largo: 15,00-

15,54 mm. Pronoto l/a = 0,59-0,69; élitro l/a

= 2,57-3,10. Setas: pronoto con 16-21; estría

7 con 1-2 basales, 1-2 apicales, con una cen-

tral o sin ella; estría 8 con 27-33; serie lateral

con 14-21.

Notas comparativas. Esta especie comparte

con C. cyaneus y C. substriatus la presencia

en el saco interno de lóbulo basal (2) ancho;

se diferencia de estas por la forma del lóbulo

apical del saco interno y por presentar lóbulo

basal (1).

Etimología. El epíteto específico hace alu-

sión a que ha sido hallada en regiones mon-

tañosas.

Distribución. Esta especie se encuentra dis-

tribuida en regiones montañosas de la región

Metropolitana de Santiago (Fig. 61).

Material examinado. Holotipo Sd, Lo

Valdés, Santiago, 9-X1968, col. J. Solervi-

cens (INCO). Alotípo Y, mismos datos que

el holotipo. Paratipos. CHILE: REGION

METROPOLITANA DE SANTIAGO: 1 Y

Alto de Cantillana, 3-XI-1981, col. M. El-

gueta (MHNS); 1 UY Baños Colina, 14-III-

1983, col. G. Arriagada (MHNS); 1 d El

Canelo, 28-IX-1970, col. G. Barria y L. Al-

varez (INCO); 1 d El Peumo, 19-1-1951, col.

Marb (MLP); 1 8 El Volcán, 9-XI-1969, col.

L. Alfaro (MHNS); 2 dd Lo Valdés, 9-X-

1968, col. J. Solervicens (MLP, INCO).

CNEMALOBUS PICEUS sp. nov.

(Figs. 10, 11, 31, 61, 66, 83, 94,92)

Descripción. Holotipo macho (Fig. 66),

largo: 16,28 mm. Coloración negra. Glosa

con dos setas lateroapicales, borde anterior

recto, ángulos anteriores marcados; mentón

con dos setas, diente corto, alcanzando la mi-

tad de los epilobos. Antenas con antenitos

subrectangulares, setas sólo lateroapicales.

Ojos poco globosos, acuminados en la base;

con borde anterior recto y posterior oblicuo.

Pronoto (Fig. 31) transversal (l/a = 0,63); su-

perficie dorsal poco convexa; ángulos anterio-

res marcados; borde posterior levemente

escotado; epipleura muy ancha centralmente;

márgenes anchos, ensanchados y aplanados

hacia atrás, con 22, 29 setas que llegan hasta

el tercio apical; foseta posterior con una, dos

setas; ángulos posteriores rectos. Prosterno

con pocas setas, apófisis prosternal larga

(Figs. 36, 37). Elitros con superficie dorsal

plana y bordes subparalelos (l/a = 2,95), en-

sanchados hacia atrás: lisos; canaleta apenas

perceptible en el ápice; interestría 3 sin setas;

estría 7 con una, dos setas basales; estría 8 no

paralela a la lateral, pero poco separada de

ésta en el ápice, con 23, 28 setas; interestría 9

levemente convexa, casi plana, ensanchada en

el tercio apical; serie lateral con 13, 15 setas.

Protibia no ensanchada; espolón tibial corto y

ancho, alcanzando la base del protarsito 3;

protarsitos poco espandidos en el ápice ex-

terno, 1 mucho menos ancho que largo, con

una seta lateral (como en Fig. 16) y un con-

junto desordenado de setas ventrolaterales

(como en Fig. 19); protarsitos 2 y 3 menos del

doble de ancho que largos con una seta dorso-

lateral. Genital (Figs. 83, 84) con lóbulo

medio delgado y levemente arqueado, de ápice

corto, angosto, redondeado; lígula derecha

ancha y larga; saco interno tan largo como las

tres cuartas partes de la longitud del lóbulo

medio y del mismo ancho que éste; lóbulo ba-

sal (1) dividido; lóbulo basal (2) ancho; lóbulo

apical ancho, curvado en "S", con base tan

ancha como la región media y apical; pieza |

copulatriz espatulada, pequeña.

|

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 27

Alotipo Largo: 15,98 mm. Pronoto l/a = 0,55;

élitro l/a = 2,80. Setas: pronoto con 23, 24,

foseta posterior con una, tres: estría 7 una, dos

basales; estría 8 con 30, 31; serie lateral con

21, 23. Espolón tibial largo y ancho, alcan-

zando la base del protarsito 5; protarsitos leve-

mentes ensanchados, 2 y 3 con dos setas

ventrolaterales. Genital (Fig. 92) con esper-

mateca larga y curva; sin bursa de la esper-

mateca; ducto común largo, sin ampolla;

glándula espermatecal piriforme, corta; estilos

cortos y curvos, de ápice redondeado.

Variación ¡intraespecífica- Largo: 15,98-

18,69 mm. Pronoto l/a = 0,55-0,63; élitro l/a

= 2.54-2,95. Setas: pronoto con 22-30, foseta

con 1-3; estría 7 con una o dos basales; estría

8 con 21-31; serie lateral con 13-25.

Notas comparativas. Esta especie comparte

con C. montanus la presencia del lóbulo basal

(1) del saco interno dividido, y se diferencia

de esta por la forma del prosterno y del lóbulo

apical del saco interno.

Etimología. El epíteto especifico hace alu-

sión a la coloración de los ejemplares.

Disiribución. Esta especie se encuentra dis-

tribuida en regiones montañosas de la Cordi-

llera de la Costa, de las regiones de Valparaíso

y Metropolitana de Santiago (Fig. 61).

Material examinado. Entre el material estu-

diado se encuentra un ejemplar macho de Co-

quimbo, Puerto Oscuro, que no se le ha

adjudicado el status de tipo debido a que la

forma del protórax es muy diferente, a pesar

de que el saco interno es muy semejante al

holotipo.

Holotipo d, Chile, Santiago, Cerro El Roble,

28-X-1981, 2200 m s.n.m., col. M. Elgueta

(MHNS). Alotipo Y, mismos datos que el

holotipo. Paratipos. CHILE. METRO-

POLITANA DE SANTIAGO: 1 3 Cerro el

Roble, 28-X-1981, 2250 m s.n.m., col. El-

gueta (MLP); 1 9 22-XI-1982, 2200 m s.n.m.,

col. M. Elgueta (MHNS). VALPARAISO: 1

gd Cerro el Roble, 30/31-IX-1976, col. L.

Peña (MHNS); 2 dd Palmas de Ocoa, col. E.

Maury (MACN, IADIZA).

CNEMALOBUS PULCHELLUS sp. nov.

(Figs. 2, 5, 19, 32, 61, 67, 85,86, 93)

Descripción. Holotipo macho (Fig. 67),

largo: 21,57 mm.

Coloración negra con reflejos violáceos.

Glosa con dos setas lateroapicales, borde ante-

rior recto, ángulos anteriores redondeados;

mentón con tres setas, diente poco más corto

que los epilobos. Antenas con antenitos

subrectangulares, setas sólo laterales. Ojos

poco globosos, angostos y acuminados en la

base; con borde anterior recto y posterior obli-

cuo. Pronoto (Fig. 32) transversal (l/a =

0,63); superficie dorsal levemente convexa;

borde posterior poco escotado; epipleura

ancha, no angostada en el medio; márgenes

anchos, ensanchados en el cuarto posterior,

con 18, 19 setas que llegan hasta la mitad;

foseta posterior con una seta; ángulos poste-

riores redondeados. Prosterno con pocas

setas, apófisis prosternal corta. Elitros con

bordes subparalelos (l/a = 2,93); planos dor-

salmente; lisos; sin canaleta; interestría 3 con

una O sin seta apical; estria 7 con dos, tres

setas basales y tres, cuatro apicales; estría 8

paralela a la lateral con 31, 34 setas; interes-

tría 9 plana y delgada, no ensanchada en el ter-

cio apical; serie lateral con 20, 23 setas.

Protibia no ensanchada; espolón tibial ancho,

alcanzando la base del protarsito 3; protarsitos

expandidos en el ápice externo, anchos, 1 tan

ancho como largo, con una seta lateral (como

en Fig. 16) y un conjunto desordenado de

setas ventrolaterales (Fig. 19); protarsitos 2 y

3 del doble de ancho que largo, con una seta

dorsolateral. Genital (Figs. 85, 86) con lóbulo

medio levemente ensanchado en el tercio api-

cal, ápice corto y redondeado; lígula derecha

angosta y larga; saco interno tan ancho y largo

como el lóbulo medio; sin lóbulos basales;

lóbulo apical largo y curvo, en forma de "C”,

con su base ancha; pieza copulatriz espatu-

lada, pequeña.

28 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Alotipo. Largo: 19,96 mm. Pronoto l/a =

0,62; élitro l/a = 2,65. Setas: pronoto con 19,

20, foseta posterior con una, dos; interestría 3

con dos apicales; estría 7 con tres basales y

seis, siete apicales; estría 8 con 24, 29; serie

lateral con 19, 20. Espolón tibial largo y an-

cho, alcanzando la base del protarsito 4; pro-

tarsitos no ensanchados, 2 y 3 con dos setas

ventrolaterales. Genital (Fig. 93) con esper-

mateca larga y curva; bursa de la espermateca

larga (largo mayor a dos veces el ancho); dis-

tancia bursa y ducto común corta; ducto

común largo, sin ampolla; glándula espermate-

cal alargada; estilos largos y curvos, de ápice

delgado.

Variación intraespecífica. Largo: 15,68-

21,78 mm. Pronoto l/a = 0,62-0,66; élitro l/a

= 2,64-3,00. Setas: pronoto con 14-24, foseta

posterior con 1-2; interestría 3 con 1-2 apical

o sin ellas; estría 7 con 1-3 basales y 2-7 api-

cales; estría 9 con 24-39; serie lateral con 16-

2

Notas comparativas. Esta especie es muy se-

mejante a C. montanus. y C. piceus y se dife-

rencia de ambas por presentar la octava estría

paralela a la serie lateral de setas.

Etimología. El epíteto específico pulchellus

hace alusión a los reflejos violáceos y forma

grácil del cuerpo de esta especie.

Distribución. C. pulchellus se encuentra dis-

tribuida en regiones montañosas de la región

Metropolitana de Santiago (Fig. 61).

Material examinado. Holotipo Y Chile,

Santiago, Cantillana, XII-1979, col. L. Peña

(MLP). Alotipo Y mismos datos que el

holotipo. Paratipos. CHILE. METRO-

POLITANA DE SANTIAGO: 5 d98 19 Can-

tillana, XII-1979, col. L. Peña (IADIZA,

MACN, MLP); 2 8d IX-1990, col. L. Peña

(MHNS); 1 3 2000 m s.n.m., 16-XI-1990, col.

M. Elgueta (MANS); 13 19 Horcón de Pie-

dra, 11-XII-1983, col. L. Peña (MHNS); 4 3g8

Piche Alhue, 1800 m s.n.m., 1/8-XII-1969, col.

L.Peña (INCO).

CNEMALOBUS SULCIFERUS Philippi 1864

(Figs. 33, 60, 68, 87-90, 94)

Cnemalobus sulciferus Philippi, 1864: 461.

Cnemacanthus sulcifer: Csiki, 1928:

Blackwelder, 1944: 28.

16;

Redescripción. Holotipo macho (Fig. 68),

largo: 18,84 mm. Coloración negra. Glosa

con dos setas lateroapicales, borde anterior

emarginado; ángulos anteriores rectos; mentón

sin setas, con diente corto, que alcanza la mi-

tad de los epilobos. Antenas con antenitos

subrectangulares, setas sólo lateroapicales.

Ojos poco globosos, acuminados en la base;

con borde anterior subcircular y posterior obli-

cuo. Pronoto (Fig. 33) transversal (l/a =

0,62); superficie dorsal levemente convexa;

borde posterior cóncavo; epipleura ancha, an-

gosta en la base; márgenes anchos, en-

sanchados hacia atrás, con 18 setas que llegan

hasta el tercio apical; foseta posterior con una

seta; ángulos posteriores redondeados.

Prosterno con pocas setas, apófisis prosternal

corta. Elitros planos dorsalmente, con bordes

subparalelos (l/a = 3,00); lisos; canaleta pro- |

funda; interestría 3 con una, dos setas

apicales; estría 7 con una seta apical: estria 8

no paralela a la lateral, con 29, 36 setas; inter-

estría 9 muy convexa y ancha en el tercio api- |

cal; serie lateral con 26, 29 setas. Protibia

levemente ensanchada en el medio; espolón

tibial largo y ancho, alcanzando la base del

protarsito 3; protarsitos expandidos en el ápice

externo, anchos, 1 más largo que ancho, con |

una seta lateral (como en Fig. 16) y un con- |

junto desordenado de setas ventrolaterales

(como en Fig. 19); 2 y 3 menos del doble de |

ancho que largo, con una seta dorsolateral. '

Genital (Figs. 87-90) con lóbulo medio leve- |

mente arqueado, de ápice corto y redondeado; |

lígula derecha angosta y larga; saco interno:

dos tercios de la longitud del lóbulo medio,

con su base angosta, muy ensanchado en el |

medio; sin lóbulos basales; lóbulo apical!

recto, con base angosta; pieza copulatriz |

espatulada, pequeña.

Hembra Largo: 19,44 mm.

0,61; élitro l/a = 2,84. Setas: pronoto con 19,

21, interestría 3 con dos apicales; estría 8 con

Pronoto l/a =|

Roig-Juñent: Las especies de Cnemalobus exclusivas de Chile 29

30, 33; serie lateral con 25, 26. Protibia con

borde externo ensanchado; espolón tibial

largo y ancho, alcanzando la mitad del protar-

sito 4; protarsitos no ensanchados, 2 y 3 con

dos setas ventrolaterales. Genital (Fig. 94)

con espermateca larga y curva, ensanchada en

la región media; bursa de la espermateca larga

(más de dos veces más larga que ancha); dis-

tancia entre la bursa y ducto común corta;

ducto común corto, sin ampolla; glándula es-

permatecal piriforme, grande; estilos largos y

curvos, de ápice delgado.

Variación intraespecífica. Largo: 14,24-

20,23 mm. Pronoto l/a = 0,59-0,70; élitro l/a

= 2,84-3,30. Setas: pronoto con 12-22, foseta

posterior con una o dos; interestría 1 con una

apical o sin ella; interestría 3 con 1-4 apicales;

estría 7 con 1-3 apicales o sin ellas; estría 8

con 26-36; serie lateral con 12-29. Saco in-

terno que se evierte hacia atrás (Figs. 87, 88) o

hacia abajo (89, 90).

Notas comparativas. Esta especie posee la

canaleta elitral muy marcada como C. ger-

maini y C. striatipennis, y se diferencia de

éstas por la forma del saco interno.

Distribución. C. sulciferus se encuentra dis-

tribuida en zonas montañosas de la región

Metropolitana de Santiago (Fig. 60), al igual

que C. pulchellus, cordilleras de Bío Bío y

zonas costeras y montañosas del Maule.

Material examinado. Holotipo Ud, nro. 2759

(MHNS). CHILE. METROPOLITANA DE

SANTIAGO: 4 8d Cántillana, XII-1979, col.

L. Peña (CLP, MLP); 1 9d 2000 m s.n.m., 16-

XI-1980, col. M. Elgueta (MHNS); 1 9 2000-

2200 m s.n.m., 31-X-1982, col. M. Elgueta

(MHNS); 3 dd Cordillera de Aculeo

(MHNS); 1 Y Piche Alhue, 1800 m s.n.m.,

1/8-XI1-1969, col. L. Peña (INCO). MAULE:

INS XIE1979, col. L. Peña (CLP); 3 Id 2

Q9 Cordillera de Curicó (MHNS); 2 dd 4

QQ El Coigual, X/XI-1955, col. L. Peña

(IADIZA); 4 98 El Coigual, Cordillera de

Curicó 1400-1600 m s.n.m., 11/13-1-1955, col.

Peña-Barros (MHNS); 1 Ud Fundo Malcho,

Cordillera de Parral, XI-1955, col. L. Peña

(IADIZA);, 5 88 Piscicultura, XI-1979. col.

L. Peña (CLP, MLP); 1 d Constitución, col.

Reiche (MHNS); 1 Y Lontué (MHNS); 1 Y -

El Radal, Cordillera Talca, 5/8-I1-1951, 1300

m s.n.m., col. Peña-Barros (MHNS). BIO

BIO: 2 838 Cordillera de Chillán (MHNS).

SIN DATOS DE LOCALIDAD: 1 Sd

(MHNS ); XII-1979, col. L. Peña (MHNS).

CONCLUSIONES

Al igual que en el estudio de las especies ar-

gentinas los caracteres aportados por los geni-

talia masculina y femenina son diagnósticos a

nivel específico.

Sobre la base de estos caracteres y de la

morfología externa se han podido reconocer

dieciseis especies presentes en Chile. Dos de

ellas compartidas con Argentina (C. arau-

canus y C. curtisii), las restantes son endémi-

cas de Chile.

Las cinco especies que habitan el Norte

Chico comparten estados de caracteres plesio-

morfos en sus estructuras genitales con C.

striatus, tales como el tamaño de la bursa de la

espermateca y forma de la pieza copulatriz.

Tres de estas especies (C. pegnai, C. nuria y

C. convexus) podrían conformar un grupo

monofilético puesto que comparten en forma

exclusiva caracteres de la morfología externa,

tales como la forma de la apófisis prosternal.

A su vez las dos especies restantes del Norte

Chico (C. cylindricus y C. reichardti) poseen

caracteres exclusivos (callo humeral del élitro,

pilosidad antenal) dentro del género lo cual las

relacionaría como especies hermanas.

Todas las demás especies chilenas poseen

estados apomorfos en las estructuras estruc-

turas genitales que las relacionan con las espe-

cles argentinas.

Siete especies son reconocidas como

nuevas: Cnemalobus cylindricus, C. montanus,

C. nuria, C. pulchellus, C. striatipennis y C.

reichardti.

AGRADECIMIENTOS

Deseo expresar mi gratitud a las siguientes

personas: al Dr. Juan José Morrone por haber

leido críticamente parte del manuscrito como

así mismo al Dr. Axel Bachmann, Dra. María

M. Cigliano, Dra. Analía Lanterí, Dr. Emilio

30 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Maury y Dr. Arturo Roig Alsina por su ayuda

en el esclarecimiento de no pocos problemas y

a la Srta. Nelly Vittet por su valiosa y desin-

teresada ayuda en la corrección del manuscrito

De igual modo quiero agradecer a los res-

ponsables de las colecciones consultadas, por

las facilidades acordadas para realizar el estu-

dio

También deseo agradecer al CONICET y a

las autoridades de la División Entomología de

la Facultad de Ciencias Naturales y Museo de

La Plata, quienes permitieron el uso de sus

instalaciones para desarrollar los trabajos ne-

cesarios y a la National Geographic Society

(NGS 3966-88; NGS 4662-91) por sus aportes

para los viajes realizados.

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Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 31-40

DESCRIPCION DE DOS NUEVAS ESPECIES DE UROLEUCON

(HOMOPTERA: APHIDIDAE)

MIGUEL A. DELFINO -

RESUMEN

Se describen dos especies nuevas de áfidos halladas en la Argentina: Uroleucon (Uroleucon)

gochnatiae sp.nov. sobre Gochnatia glutinosa (Don) Don y Uroleucon (Lambersius) tessariae sp.

nov. sobre Tessaria absinthivides (Hook. et Arn.) DC.

ABSTRACT

Two new species of aphids are described from Argentina, Uroleucon (Uroleucon) gochanatiae sp.

nov. from Gochnatia glutinosa (Don) Don, and Uroleucon (Lambersius) tessariae sp. nov. from

Tessaria absinthivides (Hook. et Arn.) DC.

INTRODUCCION

El género Uroleucon agrupa especies de áfi-

dos que colonizan Asteraceae (= Compositae),

en su mayoría distribuídas en el Hemisferio

Norte. En Sudamérica, la afidofauna aún per-

manece desconocida en su mayor parte;

Blanchard (1939) y Essig (1953 y 1956) con-

sideran varias especies, describiendo por

primera vez la mayoría de ellas, lo que hace

suponer que este género podría estar mejor

representado en esta parte del continente de lo

que habitualmente se estima.

En este trabajo se dan a conocer dos espe-

cies nuevas del género Uroleucon, colectadas

en la provincia de Tucumán, sobre especies de

plantas nativas del área.

¡Cátedra de Entomología. Facultad de Cíencias Exac-

tas, Físicas y Naturales, Universidad Nacional de Cór-

doba, Av. Vélez Sarsfield 299, 5000-Córdoba, Argentina.

(Recibido: 15 de febrero de 1993. Aceptado: 24 de

mayo de 1993.)

UROLEUCON (UROLEUCON)

GOCHNATIAE Delfino, sp. nov.

(Figs. 1-5; Tabla 1)

Hembra vivípara áptera.

Color. Especímenes vivos, verde oscuro con

cabeza negra. Antenas, patas, sifones y cauda,

negro. Especímenes aclarados con cabeza os-

cura, antenómeros 1 y II ligeramente más pig-

mentados; los restantes casi negros, a

excepción de la porción basal del antenómero

III, más clara. Rostro tan pigmentado como la

cabeza, aunque los dos últimos rostrómeros

más oscuros. Tórax claro con algunas áreas

pleurales oscuras. Patas con coxas, trocán-

teres y porción basal de los fémures tan pig-

mentados como la porción basal del

antenómero III; porción media y distal de los

fémures más oscura, siendo la mitad anterior

más pigmentada aún; tibias oscuras con extre-

mos distales casi negros, como los tarsos, Ab-

domen claro con peritrema-de los espiráculos

oscuros; región tergal con escleritos es-

casamente pigmentados en los cuales se hallan

las setas. Sifones uniformemente oscuros;

cauda, como asi también las placas anal y

genital, apenas menos pigmentadas que los si-

fones.

32 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Caracteres morfológicos. Longitud del

cuerpo (Fig.1), 1,92-2,49 mm. Cabeza (Fig.3)

con frente sinuosa; tubérculos anteníferos

poco desarrollados, apenas sobrepasan al

tubérculo frontomedial. Setas sobre los tubér-

culos anteníferos, puntiagudas, 0,035-0,039

mm de longitud. Antenas con antenómeros I,

II y IT lisos, sin imbricaciones notorias; an-

tenómero IV con imbricaciones débiles en la

base y progresivamente más marcadas hacia el

ápice, las que se continúan en los restantes an-

tenómeros; proporciones entre los an-

tenómeros II-VI, 100 (UD): 77-91 (1V): 66-74

(V): 26-31 (base del VI) + 89-107 (proceso

terminal del VI); antenómero III (Fig.2) con 8-

14 sensorios secundarios dispuestos en hilera

cubriendo los 2/3-4/5 de la superficie distal

del antenómero; éste con setas puntiagudas,

subiguales al diámetro basal del mismo,

0,027-0,031 mm de longitud. Relación entre

el proceso terminal y la base en el antenómero

VI, 3,17-3,70. Superficie dorsal de la cabeza

con dos "pseudocelos", semejantes a sensorios

secundarios con reborde en forma de anillo

quitinoso, en algunos especímenes se observan

sólo cicatrices en este lugar. Rostro llega

hasta el tercer par de coxas; último ros-

trómero, 0,15-0,16 mm de longitud, subigual a

la base del antenómero VI y 1,06-1,13 veces la

longitud del distitarso del último par de patas,

con 7-10 (generalmente 9) setas accesorias.

Protórax con un par de papilas marginales,

más cortas que la mitad de la longitud de la

seta adyacente; con base amplia y porción dis-

tal marcadamente cónica. Patas normales, con

fémures y tibias posteriores, 0,31-0,39 y 0,64-

0,75 veces la longitud del cuerpo, respecti-

vamente; relación entre la longitud de la tibia

y la del fémur, 1,92-2,30. Basitarso en los tres

pares de patas con 3 setas (3:3:3).

Abdomen sin papilas marginales; setas ter-

gales con ápice difuminado, ligeramente capi-

tadas, la mayoría de ellas se hallan en

escleritos escasamente pigmentados, los que

no se fusionan en los tergitos VI y VIII.

Setas del tergito VIII subiguales al ancho

medio de los sifones, 0,058-0,066 mm de

longitud y en número de 3-4. Esclerito antesi-

funcular membranoso con algunos escleritos

pigmentados donde se hallan setas; el postsi-

funcular no evidente. Sifones subcónicos

(Fig.4), relación entre el ancho basal y el

subapical, 1,57-2,40; ligeramente curvados

hacia afuera; 0,24-0,29 veces la longitud del

cuerpo; 0,86-1,13 veces la longitud del an-

tenómero III y 1,81-2,10 veces la longitud de

la cauda; reticulados en su porción distal, re-

lación entre la longitud del área reticulada y la

del sifón 0,36-0,45; fuertemente imbricados

inmediatamente por debajo de la zona reticu-

lada; base de los sifones, lisa. Cauda lanceo-

lada (Fig.5), relación entre la longitud total de

la misma y su ancho basal, 1,69-2,00; con 2

pares de setas laterales, además de 2-5 setas

subapicales más cortas. Placa genital

subovalada con 2 setas en la región anterior

del disco y 7-11 setas en el margen posterior.

Hembra vivípara alada. Desconocida.

Material tipo. Holotipo: hembra vivípara áp-

tera, ejemplar inferior de los dos ápteros de la

preparación microscópica .88088e; sobre

Gochnatia glutinosa; camino El Infiernillo-

Amaicha del Valle, provincia de Tucumán

(Argentina); 11-MAR-89; M.A.Delfin. Para-

tipos: 13 hembras vivíparas ápteras en 7

preparaciones microscópicas 88088a-g, con

los mismos datos del holotipo.

El holotipo se deposita en la Cátedra de En-

tomología, Universidad Nacional de Córdoba.

Los paratipos se distribuyen en la misma Insti-

tución y en el British Museum Natural History

(Londres).

Comentarios

U. gochnatiae pertenece al subgénero Uroleu-

con, a pesar de su cauda oscura que también la

relaciona con las especies del subgénero

Uromelan. No obstante, es conocido que este

carácter de coloración de la cauda es artificial

y de valor relativo.

Desde el punto de vista morfológico, U.

gochnatiae está relacionada con Uroleucon tu-

cumani (Essig, 1953), pero puede distinguirse

de ésta porque, en los sifones, la porción api-

cal reticulada es mayor; en efecto, la relación

entre el área reticulada y la longitud total del

sifón varía entre 0,36 y 0,40; además, los indi-

viduos son de color verde con cauda oscura y

colonizan Gochnatia glutinosa. Según Delfino

(1991), en U. tucumani la relación entre el

Delfino: Nuevas especies de Uroleucon de Argentina 33

Figuras. 1-5: Uroleucon (Uroleucon) gochnatiae sp. nov. Hembra vivípara áptera: 1, Vista dorsal (x100); 2, Antenómero III

(x170); 3, Cabeza (x167); 4, Sifón (x175); 5, Cauda (x260).

34 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

área reticulada y la longitud total del sifón

varía entre 0,20 y 0,29; los individuos de esta

especie son de color negro con cauda clara y

colonizan Baccharis coridifolia De Candolle.

Gochnatia glutinosa, la planta hospedante

de U. gochnatiae pertenece a la familia de las

Asteraceae, tribu Mutisieae, subtribu Gochnat-

inae. El género Gochnatia H.B.K. posee una

distribución geográfica disyunta, agrupando

un total de 66 especies; dos de estas especies

son arbóreas paleotropicales, vegetando en las

montañas del sudeste asiático. Todas las

demás especies son neotropicales con centros

importantes en las Antillas y en el sudeste de

Brasil, y centros menores en México y los An-

des tropicales. Sería muy aventurado opinar

sobre el posible centro de origen de este

género, sólo puede suponerse que se trata de

un género muy antiguo con varias áreas secun-

darias de dispersión (Cabrera, 1971). G. gluti-

nosa, de acuerdo a la descripción de Cabrera

(1978), es un arbusto densamente ramoso de

1,0-1,5m de altura, con ramas jóvenes den-

samente hojosas, punteado-glandulosas, lige-

ramente pubescentes o glabras; sus flores son

blancas o liláceas. Esta especie es conocida

con los nombres vulgares de "sacanza", "acan-

cio". Este arbusto es endémico del oeste de la

Argentina desde Jujuy a Neuquén, habiendo

sido recolectado en montañas no muy elevadas

de las provincias de Jujuy, Salta, Tucumán,

Catamarca, La Rioja, Mendoza, San Luis y

Neuquén. En el centro de Chile existe otra

especie, Gochnatia foliolosa (Don) Hook. et

Arn., también endémica de esa zona, que junto

a G. glutinosa forman la sección Pentaphorus

de este género (Cabrera, 1971). Sería muy in-

teresante estudiar los áfidos que tal vez colo-

nizan esta planta y relacionarlos con U.

gochnatiae.

U.gochnatiae forma colonias poco densas

en las hojas implantadas hacia el extremo dis-

tal de las ramas. Sólo se encontraron hembras

vivíparas ápteras; es probable que las formas

aladas sean poco frecuentes como ocurre en

algunas especies del género.

Todas las hembras ápteras recolectadas

poseen pseudocelos, que son cicatrices redon-

deadas con bordes definidos y más o menos

desarrolladas según los individuos; se locali-

zan allí donde se encuentran los ocelos de las

formas aladas. Holman (1971), menciona este

detalle cuando describe a Uroleucon pyrethri

diciendo que las ápteras poseen pequeños

ocelos laterales o al menos trazas pigmen-

tadas, por lo que consecuentemente, son lige-

ramente alatiformes. No describe las formas

aladas, probablemente porque no fueron en-

contradas; esta especie fue colectada en Rusia

a aproximadamente 2.000 msm. Posterior-

mente, Holman (1980), describe hembras

vivíparas ápteras y aladas de Uroleucon irani-

cum, dibujando la cabeza de las ápteras con

pseudocelos; esta especie fue colectada en Irán

a 2.200msm. Teniendo en cuenta las carac-

terísticas del ambiente donde vive U. gochna-

tiae; 2.500 msm, zona árida y ventosa en

donde G. glutinosa es la especie vegetal domi-

nante y endémica; es probable que U. gochna-

tiae se encuentre fuertemente adaptada a este

ambiente, no siendo necesaria la producción

de abundantes formas aladas para la dispersión

de la especie; la presencia de pseudocelos en

las ápteras podría ser una respuesta a las con-

diciones ecológicas de estos ambientes de

zonas relativamente altas.

Es poco probable que U. gochnatiae colo-

nice otras plantas, ya que casi todas las espe-

cies de este género son monófagas u

oligófagas sobre especies vegetales per-

tenecientes al mismo género; además, como G.

glutinosa es endémica de esta zona, podría

pensarse que U. gochnatiae es una especie

monoica y holocíclica.

UROLECON (LAMBERSIUS) TESSARIAE

Delfino, sp. nov.

(Figs.6-11; Tabla 2)

Hembra vivípara áptera.

Color. Ejemplares vivos, verde claro con an-

tenas negras y patas pardo oscuro; sifones ne-

gros. Ejemplares aclarados con cabeza clara

igual que los antenómeros I, II y porción basal

del III; los restantes fuertemente pigmentados.

Rostro claro con los dos últimos rostrómeros

pardo oscuros. Patas con coxas y trocánteres

claros; fémures con porción basal clara, pau-

latinamente más pigmentados hacia el extremo

distal; tibias oscuras con porción distal casi

negra, como así también los tarsos. Abdomen

completamente claro con sifones oscuros,

Delfino: Nuevas especies de Uroleucon de Argentina 35

Figuras. 6-11: Uroleucon (Lambersius) tessariae sp.nov.: 6, Vista dorsal hembra vivípara áptera (x90); 7, Antenómero II

hembra vivípara alada (x170); 8, Antenómero III hembra vivípara áptera (x135); 9, Cabeza hembra vivípara áptera (x160);

10, Sifón hembra vivípara áptera (x180); 11, Cauda hembra vivípara áptera (x225).

36 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

gradualmente menos pigmentados hacia la

base, la cual es más oscura que el abdomen.

Cauda amarillenta como las placas anal y

genital.

Caracteres morfológicos. Longitud del

cuerpo (Fig. 6), 2,12-3,07 mm. Cabeza (Fig.

9) con frente sinuosa, tubérculos anteníferos

tan desarrollados como dos veces el frontome-

dial. Setas sobre los tubérculos anteníferos

con ápice difuminado, ligeramente capitadas,

0,035-0,043mm de longitud. Antenas con an-

tenómeros I, II y II lisos, sin imbricaciones

notorias; antenómero IV con imbricaciones

débiles en la base y progresivamente más mar-

cadas hacia el ápice, las que se continúan en

los restantes antenómeros; proporciones entre

los antenómeros III - VI, 100 (II): 70-87 (IV):

60-74 (V): 17-24 (base del VI) + 104-129

(proceso terminal del VI); antenómero III con

9-15 sensorios secundarios dispuestos en hi-

lera sobre la porción media del antenómero

(Fig.8). Setas sobre el antenómero III con

ápice difuminado y romo, ligeramente más

cortas que el diámetro basal del mismo, 0,027-

0,03lmm de longitud. Relación entre el

proceso terminal y la base en el antenómero

VI, 5,50-6,61. Rostro llega hasta el tercer par

de coxas; último rostrómero, 0,14-0,16mm de

longitud, subigual a la base del antenómero VI

y 0,89-1,05 veces la longitud del distitarso del

último par de patas, con 8-9 setas accesorias.

Protórax con un par de papilas marginales

de base amplia y porción distal cilíndrica,

subiguales a la mitad de la longitud de la seta

adyacente. Patas normales, con fémures y ti-

bias posteriores, 0,31-0,37 y 0,56-0,69 veces

la longitud del cuerpo, respectivamente; re-

lación entre la longitud de la tibia y la del

fémur, 1,70-1,91. Basitarso de los tres pares

de patas con 3-5 setas, pudiendo presentar las

siguientes combinaciones, 3:3:3; 3:4:3; 3:5:3;

4:4:4; 4:4:3; 4:4:5; 4:3:3; 4:3:4 y 5:5:3.

Abdomen con papilas marginales, subcircu-

lares y poriformes, en los uritos II, III y IV,

excepcionalmente en el I. Setas tergales con

ápice difuminado, las del tergito VIII, 0,047-

0,058mm de longitud, más cortas que el ancho

medio de los sifones y en número de 4-7. Es-

clerito antesifuncular no evidente, el postsi-

funcular membranoso, con algunas estrías.

Sifones (Fig.11), subcilíndricos con porción

basal más ensanchada; 0,26-0,33 veces la

longitud del cuerpo; 1,00-1,17 veces la longi-

tud del antenómero III y 1,79-2,15 veces la

longitud de la cauda; reticulados en su porción

distal, relación entre el área reticulada y la

longitud total del sifón, 0,22-0,28; con imbri-

caciones inmediatamente por debajo de la

zona reticulada, paulatinamente menos mar-

cadas hacía la porción basal lisa. Cauda

lanceolada (Fig.10), en algunos ejemplares

delgada de lados subparalelos, con 7-10 setas.

Placa genital ovalada con 2 setas (a veces 3)

en la región anterior del disco y 10-16 setas en

el margen posterior.

Hembra vivípara-alada.

Color. Similar a la forma áptera pero con

tórax pardo oscura. Abdomen claro, con es-

cleritos marginales ahumados que tornan más

evidentes a las papilas marginales localizadas

en los mismos.

Caracteres morfológicos. Similares a la

forma áptera, con setas sobre los tubérculos

anteníferos, aproximadamente 0,027 mm de

longitud. Antenómero III (Fig.7) con 14-17

sensorios secundarios dispuestos en hilera so-

bre casi toda la longitud del mismo, a excep-

ción de la porción basal clara. Relación entre

el proceso terminal y la base en el antenómero

VI, 5,73-6,20. Rostro con 8-10 setas acceso-

rias. Patas con fémures y tibias posteriores,

0,33-0,37 y 0,67-0,71 veces la longitud del

cuerpo, respectivamente; relación entre la

longitud de la tibia y la del fémur, 1,93-2,00.

Sifones, 0,27-0,30 veces la longitud del

cuerpo; 0,95-1,02 veces la longitud del an-

tenómero III y 2,11-2,31 veces la longitud de

la cauda; relación entre la superficie reticulada

y la longitud total del sifón, 0,25-0,30. Cauda

y placa genital como en la forma áptera.

Material tipo. Holotipo: hembra vivípara áp-

tera, ejemplar inferior de los dos ápteros de la

preparación microscópica 88085b; sobre Tes-

saria absinthioides; próximo ruinas de Quil-

mes, sobre el río Santa María, provincia de

Tucumán (Argentina); 11-MAR-89; M.A. Del-

fino. Paratipos: 15 hembras vivíparas ápteras

en 8 preparaciones microscópicas 88085a-b y

Delfino: Nuevas especies de Uroleucon de Argentina 3

e-]; 3 hembras vivíparas aladas en 2 prepara-

ciones microscópicas 88085c-d; todos con los

mismos datos del holotipo.

El holotipo se deposita en la Cátedra de En-

tomología, Universidad Nacional de Córdoba.

Los paratipos se distribuyen en la misma insti-

tución y en el British Museum Natural History

(Londres).

Comentarios

Uroleucon tessariae pertenece al subgénero

Lambersius Olive, bien representado en el

continente americano. Según Holman

(1981a), la gran mayoría de las especies de

este subgénero viven sobre plantas per-

tenecientes a la tribu Astereae y constituyen

un grupo homogéneo, evidentemente mono-

filético, con su centro evolutivo de espe-

ciación en Norteamérica y los Andes. Las

pocas especies americanas que viven sobre

otras tribus de asteráceas (Inuleae y Cynareae)

parecen derivar de aquellas que viven sobre

Astereae. En este sentido, mayores elementos

de juicio podrían reunirse si se estudian en

profundidad las especies presentes en Sud-

américa, ya que en la Argentina y Chile se en-

contraron hasta el momento alrededor de 8

especies nativas, estimándose que existen

muchas más aún no descubiertas.

Desde el punto de vista morfológico, U.

tessariae está relacionada con Uroleucon cre-

pusisiphon (Olive, 1965) y Uroleucon mani-

tobensis Robinson, 1986. En la tabla 3, se

consideran los principales caracteres que per-

miten diferenciar estas tres especies. Cabe

destacar que U tessariae posee los sifones os-

curos, gradualmente menos pigmentados hacia

la base, por lo que resulta casi imposible es-

tablecer el límite preciso entre las zonas os-

cura y clara de cada sifón; lo que no ocurre en

la mayoría de las especies conocidas del sub-

género Lambersius.

Holman (1981b), revisa las especies de

Uroleucon que colonizan asteráceas per-

tenecientes a la tribu Inuleae; comenta que la

mayoría de ellas pertenecen a Uroleucon s. str.

y menciona a Uroleucon idahoense (Miller,

1933) como la única especie perteneciente al

subgénero Lambersius que coloniza Inuleae, la

cual es solamente conocida en Estados Unidos

de Norteamérica. U. tessariae difiere de U.

idahoense porque presenta papilas marginales

en el abdomen, la longitud del último ros-

trómero es 0,14-0,16mm, la de los sifones

0,71-0,89mm y vive sobre T. absinthioides;

mientras que U. idahoense no posee papilas

marginales en el abdomen, la longitud del

último rostrómero es 0,16-0,18mm, la de los

sifones 1,04mm y vive sobre Anaphalis sp..

Estos datos de U. idahoense fueron tomados

de Robinson (1986), puesto que el material

tipo de esta especie se halla perdido.

T.absinthioides, la planta hospedante de U.

tessartae, pertenece a la familia de las Astera-

ceae, tribu Inuleae, subtribu Plucheineas

Cabrera (1978). El género Tessaria Ruiz et

Pav. comprende 7 u 8 especies sudamericanas,

cuatro de éstas se hallan en la Argentina. 7.

absinthoides de acuerdo a la descripción de

Cabrera (1939), es un arbusto cano-tomen-

toso, con raíces gemíferas y tallos erectos de

1,0-1,5m de altura; hojas aserradas; capítulos

violados, con numerosas flores. Esta especie

es conocida con los nombres vulgares de

"brea", "pájaro bobo", "suncho negro". Este

arbusto es frecuente en los suelos arenosos,

algo húmedos, de Bolivia, Uruguay, Chile y

Argentina desde Jujuy hasta Chubut, a veces

crece en las dunas litorales del Atlántico,

donde constituye un elemento fijador bastante

importante, y otras en los cauces arenosos, se-

cos la mayor parte del año, de los ríos medi-

terráneos; ha sido colectada en las provincias

de Jujuy, Salta, Tucumán, Santiago del Estero,

Catamarca, San Luis, San Juan, Mendoza,

Buenos Aires, Neuquén, Rio Negro y Chubut.

Se la ha colectado hasta los 2.600 msm. en la

provincia de Tucumán. U. tessariae colonizan

los brotes y el raquis de las inflorescencias de

su planta hospedante, donde forma colonias

densas y móviles, pues se dispersan con facili-

dad ante movimientos extraños. Es probable

que esta especie sea monoica y tal vez

holocíclica en las zonas altas donde se encuen-

tra su planta hospedante.

38 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

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39

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40 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

TABLA 3

PRINCIPALES CARACTERES COMPARATIVOS DE U. TESSARIAE, U. CREPUSISIPHON Y U. MANITOBENSIS.

HEMBRAS VIVÍPARAS ÁPTERAS

Planta Hospedante

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 41-45

HERMETISMO EN SOCIEDADES MIXTAS DE HORMIGAS

(HYMENOPTERA:FORMICIDAE) EN NIDOS ARTIFICIALES!

JOAQUIN H., IPINZA-REGLA?, CECILIA CARBONELL?

Y MARIA A. MORALES?

RESUMEN

Se analiza el hermetismo entre una sociedad de Camponatus morosus, otra de Brachymyrmex giardii

y una sociedad mixta de Camponotus morosus + Brachymyrmex giardii obtenidas desde su ambiente

natural, las que fueron instaladas en nidos artificiales en el laboratorio. Se hicieran experiencias de

transferencia midiéndose una serie de unidades conductuales: exploración antenal, abertura

mandibular, apercollamiento, flexión de abdomen, simulación de picadura, movimientos bruscos de

retroceso, lucha y transporte de la intrusa. Se realizó una descripción estadística del tiempo de

latencia de presentación de los eventos conductuales y una comparación entre los tipos de

transferencia mediante la prueba de Kruskal Wallis.

ABSTRACT

Closure between societies of Camponotus morosus, Brachymyrmex giardii, and a mixed society of

Camponotus morosus and Brachymyrmex giardii, obtained from nature, was studied in artificial

nests. Ants of one colony were introduced into other colonies, observing antennal exploration,

mandibular openning, snatching, dorsal or ventral abdominal flexion and expulsion of the intruder.

Statistical descriptions of the time of presentation of the events and relations with the species

involved were done using Kruskal Wallis.

INTRODUCCION

En las hormigas como en otros insectos so-

ciales-termites, avispas, abejas las sociedades

son consideradas herméticas; no aceptan indi-

viduos "intrusos" en sus nidos, de tal manara

que podemos deducir que existe un meca-

nismo de identificación que permite a las

obreras discriminar sobre los miembros de su

propia sociedad versus individuos de so-

ciedades extrañas (Jaisson, 1975). A comien-

zos de este siglo, se pudo comprobar que esta

Financiado por FONDECYT Proyecto 92-959

2 Laboratorio de Zoología y Etología Experimental,

Fac. Ciencias Veterinarias y Pecuarias, Universidad de

Chile, Casilla 2, Santiago (15) - Chile.

(Recibido: 3 de marzo de 1993. Aceptado: 15 de

diciembre de 1993)

discriminación está basada en un tipo de infor-

mación química (Bagneres et al., 1991.).

No obstante, se ha observado en algunos ca-

sos que hormigas pertenecientes a nidos veci-

nos son acogidos sin ningún tipo de rechazo

(Errard y Jaisson, 1984). Más interesante es el

caso de observar, en la naturaleza, asociacio-

nes de hormigas heteroespecíficas convivien-

do en un mismo nido, constituyendo

sociedades mixtas (Errard, 1986).

Esto último nos indujo a realizar algunas

observaciones referente al comportamiento

que hormigas, tanto de nidos simples como de

nidos mixtos, presentan en un ambiente artifi-

cial.

El objetivo específico del presente trabajo

será verificar el hermetismo entre sociedades

de Camponotus morosus Smith, 1858 y

Brachymyrmex giardii Emery, 1894, y so-

42 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

ciedades mixtas de C. morosus y B. giardii ob-

tenidas en la naturaleza.

MATERIALES Y METODOS.

A fin de analizar el hermetismo entre una so-

ciedad de Camponotus morosus, Brachymyr-

mex giardii y una sociedad mixta de C.

morosus + B. giardii se trabajó con ejemplares

de hormigas de cuatro sociedades: dos so-

ciedades correspondientes a C. morosus, ubi-

cadas a una distancia de 100 metros entre ellas

(Nido A y Nido B); una sociedad de B. giardii

(Nido C), y una sociedad mixta de C. morosus

+ B. giardii (Nido D), las que fueran recolec-

tadas en diferentes zonas del matorral precor-

dillerano ubicado en San Carlos de

Apoquindo, 20 kilómetros al Este de Santiago.

Cada nido contó con un número de 60 indi-

viduos con sus respectivos huevos y larvas,

los que posteriormente fueron instalados en el

laboratorio en sus respectivos nidos artifi-

ciales. Estos, estructuralmente, constan de un

área de residencia (nido propiamente tal) de 9

x 9 x 9 centímetros, un dispositivo como

fuente de humedad para el nido, de las mismas

dimensiones y un área de exploración y forra-

jeo de 35 x 20 x 10 centímetros (Ipinza et al

1991).

La dieta artificial consistió en pulpa de

manzana mezclada con miel (Dejean, 1986), y

además trozos de pollo crudo como fuente

proteica (Ipinza et al., 1991).

La temperatura ambiental se mantuvo en

20” +/-2%C. y una humedad relativa de 45% a

50%. Las 12 horas luz se proveyeron con

tubos fluorescentes y difusores blancos

(Cosens Toussaint, 1985).

Para el marcaje de las hormigas, se utilizó

el método descrito por Fresneau y Charpin

(1977) y probado por Ipinza et al. (1992) en

C. morosus.

Después de tres semanas de permanencia de

las hormigas en las nuevas condiciones de

laboratorio, se procedió a realizar la siguiente

experiencia.

- Hormigas del nido A (C. morosus), fueron

transferidas, de una en una hasta completar

un número de 10 hormigas por observación,

a los nidos: B (otra sociedad de C. morosus

distante a 100 metros) (Grupo l), nido C (B.

glardit) (Grupo II), y nido D (nido mixto:

C. morosus + B. giardii) (Grupo Ill).

- Hormigas del nido C (B. giardii), fueron

transferidas al nido A (C. morosus) (Grupo

IV), usando el mismo preocedimiento que

en el caso anterior.

- Hormigas B. giardii del nido D (nido

mixto). fueron transferidas al nido A (C.

morosus) (Grupo V).

- Por último, hormigas C. morosus del nido

D (nido mixto), fueron transferidas al nido

A (C. morosus) (Grupo VI).

A fin de apreciar el hermetismo entre las

sociedades en estudio se midieron los tiempos

de latencia entre las siguientes unidades con-

ductuales: exploración antenal, abertura

mandibular, flexión de abdomen, simulación

de picadura, movimientos bruscos de

retroceso, lucha, transporte de la intrusa y

muerte; descritas por De Vroey y Pasteels

(1978); Fresneau (1980).

Con los datos obtenidos se realizó una des-

cripción estadística del tiempo de latencia de

presentación de los eventos conductuales en la

transferencia de las hormigas de su propio

nido al nido de las demás receptoras. Además,

se realizó una comparación del tiempo de |

latencia de presentación de los eventos con-

ductuales entre los tipos de transferencia me-

diante la prueba de Kruskal Wallis (Hollander

y Wolfe, 1973) y como prueba de comparacio-

nes múltiples la prueba de Dunn (Hollander y

Wolfe, 1973).

RESULTADOS.

En la tabla 1, donde se describen los tiempos

de latencia de las conductas desencadenadas

luego de la transferencia de individuos ho-

moespecíficos, desde el nido A al nido B, y

que ha sido designado como Grupo Il, se ob-

serva que se manifiestan un total de 7 eventos,

siendo los más frecuentes exploración antenal |

y abertura mandibular, cuyos tiempos de laten-

cia promedio son muy similares; también se

presenta apercollamiento con una frecuencia |

parecida pero con un tiempo de latencia mayor

a los anteriores.

El número de reacciones que presenta B. |

giardii (nido C) frente a la introducción de

una hormiga de otra especie como C. morosus '

Ipinza-Regla et al.: Hermetismo en sociedades mixtas de hormigas 43

proveniente del nido A (Grupo Il) muestra

desde la ausencia de respuesta hasta la mani-

festación de 4 eventos ante la presencia de una

"intrusa". El tiempo promedio de latencia de

exploración antenal superior a un minuto, evi-

dencia un largo periodo de reconocimiento, el

de mayor duración registrado en este trabajo.

(tabla 2).

Cuando se transfieren hormigas de C. moro-

sus (nido A) provenientes de un nido indivi-

dual a un nido mixto (nido D), Grupo Ill, se

manifiestan desde 2 hasta 7 eventos. Es en

esta forma de traslado la única en la cual se

presentaron todos los eventos conductuales

conocidos, incluso trasporte y muerte de la

"intrusa", eventos que no fueron observados

en ninguno de los otros grupos en este estudio.

Nuevamente los más frecuentes son la ex-

ploración antenal y la abertura mandibular,

siguiéndole la flexión de abdomen y simulacro

de picadura (tabla 3).

En la tabla 4, se presentan los resultados de

la transferencia de una B. giardii (nido C)

originaria de un nido individual a un nido tam-

bién individual de C. morosus (nido A),

Grupo IV. Se observa escasa respuesta de C.

morosus la que se presenta principalmente con

conductas de exploración antenal y abertura

mandibular.

La transferencia de B. giardii, proveniente

de un nido mixto (nido D) a un nido de C.

morosus (nido A), Grupo V, repite la muy es-

casa reacción de parte de C. morosus, ya 0b-

servada en el grupo anterior. Sólo frente a la

transferencia de dos de las diez B. giardii, se

evidenció los eventos emploración antenal y

abertura mandibular, las que han sido consi-

deradas actitudes de reconocimiento (Ipinza et

al., 1991). El tiempo de latencia promedio fue

de 30,5 segundos con una desviación estándar

de 36; esta alta variabilidad se debe a que

frente a una de las "intrusas” la reacción en el

nido receptor fue inmediata, en cambio frente

a la otra, la reacción se produjo al minuto de

haber sido introducida (tabla 5).

Lo observado en la transferencia de hormi-

gas C. morosus provenientes de un nido mixto

(nido D) a un nido individual de C. morosus

(nido A), Grupo VI, confirma que la respuesta

frente a la presencia de unas hormiga de la

misma especie es intensa, observándose

distinto tipo y número de reacciones. En la

tabla 6 se observa, al igual que en la tabla 1, la

presencia de una gran cantidad de eventos, con

excepción de transporte de la "intrusa" y

muerte. Notoria es la alta variabilidad presen-

tada por la conducta apercollamiento.

La tabla 7, que sintetiza los eventos obser-

vados en las diferentes formas de transferen-

cia, muestra que exploración antenal y

abertura mandibular son eventos conductuales

siempre presentes. Esta tabla muestra además,

que al comparar mediante la prueba de

Kruskal Wallis el tiempo de latencia de los

eventos conductuales entre los diferentes gru-

pos, la exploración antenal difiere significati-

vamente; y según las prueba de Dunn, esta

diferencia se produce entre el Grupo II con los

grupos I, III, IV y VI. Estos mismos resul-

tados se repiten para abertura mandibular. En

el Grupo Il la reacción de B. giardil es más

lenta frente a la transferencia de C. morosus

que las que presenta C. morosus frente a indi-

viduos de su misma especie como frente a B.

glardii

Apercollamiento demostró diferencias sig-

nificativas, aún cuando no se pudo verificar

entre que grupos se producían estas diferen-

clas.

En el tiempo de presentación del evento

flexión del abdomen, en el que se diferencia el

Grupo 1 del II y del IV y el Grupo Il del III, se

constata que la respuesta de B. giardii frente a

C. morosus es más lenta que la respuesta entre

C. morosus, ya sea provengan de nidos indi-

viduales a mixtos. Por otra parte, la reacción

de C. morosus de nido individual frente a B.

giardii (también de nido individual) es mucho

más lenta que aquélla frente a C. morosus.

En relación a lucha, simulacro de picadura

y movimientos bruscos de retroceso no se pro-

ducen diferencias significativas de estos even-

tos entre los diferentes grupos.

En estas comparaciones no se incluyó trans-

porte ni muerte de la "intrusa" por ser eventos

que se manifiestan únicamente en el Grupo III.

44 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

CONCLUSIONES

- Camponotus morosus es una especie her-

mética frente a individuos homoespecíficos

porque presenta un alto número de conductas

que significan rechazo y además un bajo pe-

riodo de latencia en la aparición de los eventos

conductuales.

- Camponotus morosus es aparentemente

indiferente frente a la transferencia de otra

especie como Brachymyrmex giardii, prove-

miente de un nido mixto, lo que podría indicar

que la presencia de hormigas de diferentes

especies en un mismo nido provocaría un

efecto protector de la "intrusa" la que es

menos rechazada cuando proviene de un nido

mixto que de un nido individual.

- El tiempo de latencia de los eventos con-

ductuales: exploración antenal, abertura

mandibular y flexión del abdomen, difiere sig-

nificativamente entre los distintos grupos de

transferencia.

LITERATURA CITADA

BAGNERES, A.G.; ERRARD, C.; MULHEIM, C.; JOULIE, C.

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study of the foraging strategy of the wood ant Formica

aquilonia. Animal Behav., 33: 541-552.

TABLA 1

DESCRIPCIÓN ESTADISTICA DEL TIEMPO DE

LATENCIA DE LOS EVENTOS CONDUCTUALES

DESENCADENADOS POR LA TRANSFERENCIA DE

C. MOROSUS (NIDO A) A OTRO NIDO DE C.

MOROSUS (NIDO B).

Evento Tiempo de latencia

No. Media D.E.

(seg) (seg)

Exploración antenal 10 11959 12,6

Abetura mandibular 9 158 12,4

Apercollamiento 9 332.7) 30,9

Flexión abdomen 4 48,0 31,8

Simulacro picadura 7 53,5 32,9

Movimientos b. retroceso 5 42.6 43,9

Lucha 7 57 46,3

D.E.= Desviación estándar

DEJEAN, A. 1906. Étude du comportement de prédation

dans le genre Strumigenys (Myrmicinae). Insectes So-

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TABLA 2

DESCRIPCIÓN ESTADÍSTICA DEL TIEMPO DE

LATENCIA DE LOS EVENTOS CONDUCTUALES

DESENCADENADOS POR LA TRANSFERENCIA DE

C. MOROSUS (NIDO A) A NIDO DE B. GIARDII

(NIDO C).

Evento Tiempo de latencia

No. Media D.E.(seg)

(seg)

Exploración antenal 4 103,8 14,2

Abertura mandibular 5 85,0 43.7

Apercollamiento 2 48,2 38,9

Flexión abdomen 5 64,0 39,1)

Simulacro picadura 2 81,0 50,9

Lucha o) 30,0 18,4

D.E.= Desviación estándar

Ipinza-Regla et al.: Hermetismo en sociedades mixtas de hormigas

TABLA 3.

DESCRIPCIÓN ESTADÍSTICA DEL TIEMPO DE

LATENCIA DE LOS EVENTOS CONDUCTUALES

DESENCADENADOS POR LA TRANSFERENCIA DE

C. MOROSUS (NIDO A) A NIDO

MIXTO (NIDO D).

Evento Tiempo de latencia

No. Media D.E.

(seg.) (seg.)

Exploración antenal 10 18,0 16,3

Abertura mandibular 10 18,0 16,3

Apercollamiento 4 59,8 S2S

Flexión abdomen 8 30,9 44,8

Simulacro picadura 8 31,9 20,7

Movimiento b. retroceso 1 15,0 AN

Lucha 7 37,6 25,9

Transporte de la intrusa 1 2.0 $

sais IS 16,3

D.E.= Desviación estándar

TABLA $.

DESCRIPCIÓN ESTADÍSTICA DEL TIEMPO DE

LATENCIA DE LOS EVENTOS CONDUCTUALES

DESENCADENADOS POR LA TRANSFERENCIA DE

B. GIARDIT (NIDO MIXTO) A NIDO DE C. MOROSUS

(NIDO A).

Evento Evento Tiempo de latencia

No. Media D.E.

(se.) (seg.)

Eploración antenal 2 30,5 36,1

Abertura mandibular 2 30,5 36,1

D.E.= Desviación estándar

Evento I

Expl. antenal 18,6

Abert. mandibular 19,8

Apercollamiento 10,2

Flex. abdomen 9,1

Sim. picadura 10,4

Mov. b. retroceso 7,0

Lucha 14,3

H = índice de Kruskal Wallis;

45

TABLA 4.

DESCRIPCIÓN ESTADÍSTICA DEL TIEMPO DE

LATENCIA DE LOS EVENTOS CONDUCTUALES

DESENCADENADOS POR LA TRANSFERENCIA DE

B. GIARDIT (NIDO C) A NIDO DE C. MOROSUS

(NIDO A).

Evento Tiempo de latencia

No. Media D.E.

(seg.) (seg.)

Exploración antenal 9 Zi 14,9

Abertura mandibular 9 ZA 14,9

Flexión abdomen 1 38,0 -

Movimientos b. retroceso 3 46,0 55,5

D.E.= Desviación estándar

TABLA 6

DESCRIPCIÓN ESTADÍSTICA DEL TIEMPO DE

LATENCIA DE LOS EVENTOS CONDUCTUALES

DESENCADENADOS POR LA TRANSFERENCIA DE

C. MOROSUS (NIDO MIXTO) A NIDO INDIVIDUAL

DE C. MOROSUS (NIDO A).

Evento Tiempo de latencia

No. Media D.E.

(seg.) (seg.)

Exploración antenal 10 10,1 10,5

Abertura mandibular 10 10,1 10,5

Apercollamiento 8 91,4 150,9

Flexión abdomen 2) 69,0 9,9

Simulacro picadura 6 58,0 34,9

Movimientos b. retroceso 2) 34,0 17,5

Lucha 8 32,9 22,7

D.E.= Desviación estándar

TABLA N”7

COMPARACIÓN DEL TIEMPO DE LATENCIA DE LOS EVENTOS CONDUCTUALES ENTRE TIPOS DE

TRANFERENCIA MEDIANTE KRUSKAL WALLIS. (RANGOS MEDIOS Y VALORES DE H)

ql

41,5

36,8

14,5

20,2

16,5

n.0.

11,8

1001

17,8

Hizo

16,7

10,1

8,8

3,0

1231

GRUPOS

IV NA

22,6 DIS

29,9 24,8

n.o. n.o.

38,8 n.o.

n.0. n.o.

5,8 n.o.

n.o. n.o.

VI

14,9

13,8

12ES

21,5

17,0

AS

11,5

H

18,12 (*)

15,31 (+)

8,13 (*)

SOTA)

4,57

187,

0,65

(*) = diferencias significativas entre grupos; n.o. = conducta no observada en el grupo

es Ship di A

; AiO My

dotan cen ra apor

A EN prend

vitiafh Ñ

Lan.

a pl e ci ii

00

a pl

dl máis á

Mete

bed

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 47-56

FOUR NEW LARVAL MITES (ACARI: TROMBIDIIDAE: EUTROMBIDIINAE)

ECTOPARASITIC ON CARABIDS (INSECTA: COLEOPTERA: CARABIDAE).

RYSZARD HAITLINGER!

ABSTRACT

Four species are described as new for science: Beronium marittae nm. sp. from Chile found on

Ceroglossus sybarita, C. darwini, C. valdiviae und C. suturalis; B. sorayae n. sp. from China found

on Carabus grandis; B. lubomirae n. sp. from Sumatra and Madagascar found on Pheropsophus

javanus and P. discicollis and B. veronicae n. sp. from Canary Islands (Teneriffe) found on

Licinopsis alternans. A key for the genus Beronium is given.

RESUMEN

Se describen 4 nuevas especies: Beronium marittae n. sp. capturado en Chile sobre Ceroglossus

sybarita, C. darwini, C. valdiviae y C. suturalis; B. sorayae n. sp. capturado en China sobre Carabus

grandis, B. lubomirae n. sp. capturado en Sumatra y Madagascar sobre Pheropsophus javanus y P.

discicollis y B. veronicae n. sp. capturado en Islas Canarias (Teneriffe) sobre Licinopsis alternans.

Se entrega una clave para el reconocimiento de las especies de Beronium

INTRODUCTION

Ewing in 1925 described the larval species

Hoplothrombium quiquescutatum. lt was "de-

scribed from a single specimen adhering to

beetle mite (?) taken from the stomach of a

toad (Bufo americanus Holbrook)". Revision

of the species was made by Vercammen

Grandjean (1967). Beron (1973) described the

second larval species Hoplothrombium coif-

faiti from Morocco. larvae of the new species

were collected on Pristonychus colbi Coiff.

(Carabidae) . Southcott (1986a) erected a new

genus Beronium only for Hoplothrombium

coiffaiti Beron an eyless larva described from

cavernicolous Moroccan coleopteran. Accord-

'Department of Zoology, Wroclaw Academy of Agri-

culture, ul. Cybulskiego 20, 50-205 Wroclaw, Poland

(Recibido: 16 de Junio de 1993. Aceptado: 26 de oc-

tubre de 1993)

ing to Southcott, B. coiffaiti appears to be a

member of the subfamily Eutrombidiinae.

In this paper four new species of the genus

Beronium are described, all gathered from

carabid beetles in Chile, China, Sumatra,

Madagascar and Canary Islands. A definition

of the genus and a key to all species are given.

The terminology of structure and setal nota-

tion are adopted from Southcott (1986a, b).

The new species are deposited in the Museum

of Natural History, Wroclaw University

(MNHWU); Institute of Zoology, Polish

Academy of Science, Warsaw (IZPAS) and In-

stitute of Systematic and Experimental Zool-

ogy, Polish Academy of Sciences, Cracow

(ISEZPAS).

All measurements are given in micrometers

(nm).

48 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

RESULTS

Genus BERONIUM Southcott, 1986

Type species: Hoplothrombium coiffaiti

Beron, 1973

Definition. Eyes present or absent. Ocular

plate always present. Dorsum of idiosoma

with 5 median shields. The first shield is the

largest and bearing the following smooth or

barbed setae: scutalae 2 AM, 2 AL, 2 PL and 2

sensillae. The remaining shields bearing 2 se-

tae each. The first of these shields is dis-

tinctly larger than the remaining ones.

Sternalae I, as "migrated" setae beyond coxae

TI or on them. Coxal formula: 1-2, 1, 1. Coxae

FIT with coxalae contracted to ridged stumps.

If coxa I bears two setae, one of them is spini-

form. Tarsus I, II normal; tarsus III with 2

claws supported by ventrally directed setulose

seta arising from a long, dorsal projection of

tarsus. Mouth opening circular, chitinized.

Remarks. Southcott (1986a) in his definition

of the genus stated that the eyes were absent.

This definition was based on a single species.

The new species described below bear eyes,

except B. veronicae, but in this apecies an

ocular plate is visible. Also coxae 1 does not

always bear two setae because one of them,

the "migrated" seta is beyond the coxa in some

species.

BERONIUM MARITTAE n. sp.

(Figs 1-5)

Diagnosis. Setae PL thin and short, placed

distinctly below bases of sensillae. The dis-

tance (AP) between AL and PL over 50, setae

AL over 40, ratio AW/POL over 1.90, the

number of ventral setae 18. Dorsal setae, ex-

cept PPG very slightly barbed.

Larva. The body is elongated, distinctly

longer than wide. Scutum as in Fig. 1 bears

relatively thick setae AL and thinner setae PL

and AM. Setae AL are about twice or more

longer than PL. Sensillae are relatively thick

and are nude, over 80. Setae PL are placed in

the posterior edges of scutum. Two pairs of

eyes are placed on separate shield near the

posterior margin of scutum. Three of shields

(scutella) have two setae each. The first

scutellum is longer and wider than other ones.

The pygidial plate, conventionally called "py-

galaspis” bears a pair of weakly barbed setae

(POL), the distance between their bases

(POW): 26-30. A pair of setae at pygidial

plate placed on two small plates, convention-

ally called "parapygalaspis”, are distinctly vis-

¡ble (PPG) and bear setules. Seven pairs of

setae are beyond dorsal plates.

The ventral setae are placed behind coxae

III in two longitudinal rows. The first row

have 5 setae, the second row bears four setae.

Some specimens have one, relatively thick

seta at the postero-lateral margins (Fig. 2).

Gnathosoma with relatively short palps.

Palptarsus is barely visible. At the base of

palpfemur are flat setae, according to Vercam-

men-Grandjean (1967) they are probably dras-

tically modified gnathobasal setae (Fig. 2).

Leg I. Coxae: triangular contiguous to coxa Il,

with a large urstigma having one enlarged and

flat seta as in Fig. 2. The second seta behind

coxa near its lateral margin. According to

Vercammen-Grandjean it is probably a mi-

grated sternal seta. Tarsus with two special-

ized setae: minute famala and about twice

longer solenidion both situated as in Fig. 3,

and 18 normal setae, of which only one dorsal

seta 1s barbed (two setules). Ti - 7, Ge - 5, Fe

- 6, Tr - 1, all setae are smooth.

Leg II. Tarsus Il is distinctly shorter than Ta

I and bears 1 So and 1 barbed seta with two

setules, the remaining ones are smooth; total

14 setae, Ti - 6, Ge - 3, Fe - 5, Tr - 1, all setae

are smooth. Coxa with broad and flat seta

(Fig- 4).

Leg MIMI (Fig. 5). Tarsus distinctly enlarged

with long and curved claw and short and thick

claw. It bears total -10 setae from which one

seta is long and barbed; Ti - 5. Ge - 3, Fe - 4,

Tr - 1, all these setae are smooth.

Metric data of holotype and paratypes on Ta-

le

Haitlinger: New larval mites ectoparasitic on carabids 49

Material. Holotype, larva, Chile, from Cero-

glossus sybarita Gerst.. Paratypes: 4 1. from

C. sybarita; 4 1. from C. suturalis Fabr.; 2 1.

from G, valdiviae Hoppe, Valdivia; 2 1 from

C. darwini Hoppe, all specimens from Chile.

Holotype in IZPAS, paratypes in author”s col-

lection.

BERONIUM SORAYAE n. sp.

(Figs 6-11)

Diagnosis. Setae PL thin and short placed on

the same level as bases of sensillae. AP below

35, setae POL below 95, OW III below 75, OL

III below 80, setae OL III and POL distinctly

barbed. Pygidial plate is divided. Two pairs

of eyes present.

Larva. The body distinctly longer than wide.

Scutum as in Fig. 6 with three pairs of scu-

talae, thin and short; of them setae AL and

AM are about 1.5 times longer than PL. Sen-

sillae are damaged. Setae PL are placed on

the same level as bases of sensillae. Two pairs

of eyes are present at posterolateral margins of

scutum. The first scutellum is longer and

wider than other one ones. It bears two setae

(damaged). Also scutella II and III bear two

setae each; these setae are slightly barbed. Py-

gidial plate (pygalaspis) is divided. Setae

POL are distinctly barbed and longer than se-

tae PPG. The last setae have four distinctly

visible setules.

Twelve ventral setae placed behind coxae

III are smooth. Sternal setae I are present

(these "migrated" setae are placed distinctly

behind coxae 1).

Gnathosoma. Palps short, palptibia with bi-

fid claw, palptarsus is badly visible, no setae

on the genua. At the basis of palpfemur are

placed flat setae (Fig. 7). In front of

gnathosoma is slightly visible integument.

Leg I. Coxa with one flat and enlarged seta;

"migrated" seta as sternalae 1 is behind coxa.

Tarsus with 1 Fa, 1 So and -16 other setae, Ti

- 2 80, 1 Vs, 6; Ge - 1 So, 5; Fe - 6; Tr - 1; all

setae are smooth,

Figures 1-11: Beronium marittae n. sp.: 1. Idiosoma, dorsal view; 2. Idiosoma, ventral view; 3. Leg l, tarsus-femur; 4.

Leg Il, tarsus-femur; 5. Leg III, tarsus-trochanter. Beronium sorayae n. sp.: 6. Idiosoma, dorsal view; 7. Idiosoma, ventral

view; 8. Gnathosoma,; 9. Leg I, tarsus-femur; 10. Leg Il, tarsus-femur; 11. Leg Ill, tarsus-femur.

50 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Leg II. Coxa with one flat seta; Ta - 1 So,

1SIsetas BESO Gel MES SIMA

all setae are smooth.

Leg MIMI. Coxa with one flat seta; Ta - 10, of

them one seta is branched; Ti - 5; Ge - 3; Fe -

4; Tr - 1; all setae except one are smooth.

Metric data of holotype and paratypes as in

Table 2.

Material. Holotype, larva, China (?Tohe-

Kiang), from Carabus grandis; paratypes: 2 1.

same data as in holotype. All specimens are

deposited in ISEZPAS.

BERONIUM LUBOMIRAE n, sp.

(Figs 12-13)

Diagnosis. Setae PL thin and short placed on

the same level as bases of sensillae. AL be-

low 35, POL over 100, OW III over 75, OL TI

over 80, setae OL III and POL are slightly

barbed, setae PPG with two - four setules. Py-

gidial plate not divided. Two pairs of eyes are

present.

Larva. The body distinctly longer than wide.

Scutum as in Fig. 12 with thin setae AL about

twice longer than thin setae PL. Setae AM are

thin. Two pairs of eyes are placed on plate at

the posterior margin of scutum. The first pair

of dorsal plate (scutellum) is distinctly longer

and wider than other ones and bears two setae

shorter than length of scutellum. Scutella II,

III are weakly rounded, setae on both scutella

are distinctly longer than length of these

plates. Setae on scutella 1, II are very slightly

barbed on the tip, setae OL III are distinctly

barbed as in Fig. 7. Setae on pygidial plate

(POL) are slightly barbed. Setae PPG with

two setules in specimens from Sumatra and

somewhat more in specimens from Madagas-

car (about 4). Setae placed behind dorsal

shields are weakly barbed, their length: 20-74.

Ventral side of idiosoma with twelve small

and thin setae and two thicker setae at postero-

lateral margins (Fig. 13). Sternalae I are set

on small platelets.

Gnathosama. Mouth opening circular, chiti-

nized. Palps short, palptarsus badly visible.

At the bases of palpfemur are placed flat setae.

Leg I. Coxa with one flat and enlarged seta

and urstigma. Ta - 1 Fa, 1 So,-16; Ti - 2 So,

6; Ge - 5; Fe - 5; Tr - 1; all setae are smooth.

Leg II. Coxa with one flat and enlarged seta.

Ta - 1 So, -13 (among them 1 B); Ti - 2 So, 5;

Ge - 3; Fe - 5; Tr - 1; all setae are smooth, ex-

cept one seta on tarsus.

Leg MII. Coxa with one flat and enlarged seta.

Tarsus enlarged with about 11 setae, one of

them is relatively long and branched; Ti - 5;

Geo SmEe= 4 ino le

Metric data of holotype, paratypes and other

specimens on Table 3.

Material. Holotype, larva, Sumatra, from

Pherosophus javanus.

Paratypes: 2 1., same data as in holotype.

Other specimens: 2 1., Madagascar, from P.

discicollis Dej. Holotype and paratypes in

MNHWU, specimens from Madagascar in

author”s collection.

BERONIUM VERONICAE n. sp.

(Figs 14-17)

Diagnosis. Setae PL relatively thick and long,

setae AL and PL below 55, setae OL I below

SO. Setae PL placed behind bases of sensillae.

Setae on coxae III thick and weakly elongated.

Sternalae I on coxae I. Ratio PSL/OL I over |

2.40. Eyes absent. The number of ventral se-

tae about 24.

Larva, The body

longer than wide. Scutum as in Fig. 14 with

relatively thick and long setae PL, placed be-

hind bases of sensillae.

mentioned setae.

nude and about 100 long. ¿Eyes absent but

ocellar plate is visible. Three pairs of shields |

(scutella) with two pairs of setae each. The

Setae PL are some-

what shorter than AL, both are barbed. Setae |

AM are thin, smooth and shorter than above '

Sensillae are rather thin, |

is elongated, distinctly |

Haitlinger: New larval mites ectoparasitic on carabids 51

first shield is relatively long (over 100) and

bears two short setae, shorter than the same

setae on remaining ones. Dorsal setae are

barbed. Pygalaspis is oval and bears two setae

POL, subequal to setae PPG. Setae POL are

weakly barbed. Setae PPG have relatively

long setules.

Ventral side of idiosoma bears 24 setae

which are placed behind coxae III. Anal slit is

visible, Sternal setae absent; "migrated" setae

are present on coxae l (Fig. 15).

Gnathosoma with short palps. Palptarsus is

barely visible. At the bases of palpfemur are

flat setae. Palptibia bears bifid claw (Fig. 15).

Leg I. Coxa with two setae; thick seta and thin

seta as in Fig. 15. Ta - 1 Fa, 1 So, -13

(among them 3 setae are barbed); Ti - 2 So, 6

(3 B); Ge - 1 So, 5 (1 B); Fe - 5(1 B); Tr - 1

(Fig. 16).

Leg II. Coxa with one flat and enlarged seta;

Ta - 1 So,-11 (6 B); Ti - 2 So, 5 (3 B); Ge - 1

So, 2 B; Fe - 4 (1 B); Tr - 1.

Leg III. Coxa with one stout seta; Ta - - 13

(S B); Ti - 5 (1 B) Ge - 3; Fe - 4 (1 B); Tr - 1

(Fig. 17).

Metric data of holotype and paratypes on Ta-

ble 4.

Material. Holotype, larva, Canary Islands,

Teneriffe, from Licinopsis alternans. Pa-

ratypes: 2 l. the same data as in holotype. All

specimens are deposited in MNHWU.

KEY FOR SPECIES DETERMINATION

1 (4). Setae PL relatively thick and long (over 30), setas

on coxae III thick and weakly elongated, eyes ab-

sent.

| Figures 12-17: Beronium lubomirae n. sp.: 12: Idiosoma, dorsal view; 13. Idiosoma, ventral view. B. veronicae n.sp.: 14.

| Idiosoma, dorsal view; 15. Idiosoma, ventral view; 16. Leg I, tarsus-femur, 17. Leg III, tarsus-femur

2

28)

3 (2).

4 (1).

S (6).

6 (5).

7 (8).

8 (7).

ASB

PSB

AM

AL

121L,

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Setae AL and PL below 55, ratio PSW I/PSL I be-

low 1.80, ratio PSL VOL I over 2.40, setae OL I

DELI DA DD

e Berontum veronicae n. sp., Canary Islands.

Setae AL and PL over 60, setae OL I over 60, ratio

PSW I/PSL I over 1.90, ratio PSL OL I below

B. coiffaiti (Beron, 1973), Morocco.

Setae PL thin and short (below 25). setae on coxae

III very flat, eyes present.

Setae POL below 70, AP over 50, MA below 85,

AL over 40, ratio AW/POL over 1.90, fV-18....

ese EEES B. marittae n. sp., Chile

Setae POL over 80, AP below 40, MA over 90, AL

below 40, ratio AW/FOL below 1.80, fV - 12-14.

Pygidial plate divided, setae POL below 95, OW

TII below 75, OL III below 80, setae OL III and

BOBs tancia

toto Tia NE B. sorayae n, sp., China.

Pygidial plate not divided, setae POL over 100,

OW II over 75, OL III over 80, setae OL III and

XOJL veny eñicnaly benoecl o. cese boss osea

B. lubomirae n. sp., Sumatra, Madagascar.

ACKNOWLEDGMENTS

I would like to express my sincere thanks to -

Dr. Jr. A. Slipinski (IZPAS) and Prof. Dr. A.

Szeptycki (ISEZPAS) for the loan of the

specimens.

LITERATURE CITED

BERON, P., 1973. Un neuvelle larve d'acarien

(Hoplothrombium coiffaiti sp. n., Trombidiidae), para-

site d'un coléoptére cavernicole du Maroc. Ann. Spe-

leol., 28: 413-416.

SOUTHCOTT, R.V., 1986a. Studies on the taxonomy and

biology of the subfamily Trombidiinae (Acarina:

Trombidiidae) with a critical revision of the genera.

Austr. J. Zool., Suppl. Ser, 123: 1-116.

SOUTHCOTT, R.V., 1986b. Australian larvas of the genus

Trombella (Acarina: Trombidioidea). Austr. J. Zool.,

34: 611-646.

VERCAMMEN-GRANDJEAN, P.H., 1967. Revision of

Hoplothrombium quinquescutatum Ewing, 1925

(Trombidiidae: Acarina). Opusc. Zool., 96: 1-7.

ABBREVIATIONS

= length of scutum

= width of scutum

= distance between centres of bases of anterolat-

eral scutal setae

= distance between centres of bases of posterolat-

eral scutal setae

= distance between centres of bases of AM setae

distance between centres of AL and PL setae on

each side of anterior dorsal sautum

distance between centres of bases of AM and

AL setae

= distance between anterior end of anterior dorsal

scutum and centre point between centres of AM

setae

distance between anterior end of anterior dorsal

scutum and the midpoint between the sensilla

bases

= distance between level of centres of sensilla and

posteromost point of that scutum

= length of anteromedian seta of anterior dorsal

scutum

= length of anterolateral seta of anterior dorsal

scutum

= length of posterolateral seta of anterior dorsal

scutum

length of scutal sensillary setae

MS = distance between centres of sensilla and centres

of AM setae

SB = distance between centres of sensillary sockets

DS = length of setae on dorsal integument (beyond

shields)

OS = length of ocular sclerite

PSW = width of dorsal scutella I, II, II

PSL = length of dorsal scutella 1, II, MI

OW = distance between centres of the two medial setae

OL = length of medial setae

PGL length of pygidial plate

PGW = width of pygidial plate

POW = distance between bases of centres of POL setae

POL = length of pygidial seta

BBG length of seta placed beyond or at posterior mar- '

gin of pygidial plate

GL = length of gnathosoma

Ta (H)= height of tarsus

Ta (L)= maximum length of tarsus, exclusive of claws

and pedicle

Haitlinger: New larval mites ectoparasitic on carabids

TABLE 1

53

METRIC DATA FOR BERONIUM MARIITTAE N. SP., LARVA, HOLOTYPE (H) AND PARATYPES (P) FROM CERO-

GLYSSUS SYBARITA, C. SUTURALIS, C. VALDIVIAE AND C. DARWINI (MEASUREMENTS IN MICROMETERS).

Length

of body

Width

of body

PSW I

PSL I

OW I

OL I

PSW II

PSL II

OW II

OL II

PSW III

PSL II

OW II

OL II

PGL

160

120

122

30-50

30

164

70

S8

40

104

48

44

40

102

36

60

S0

48

E

368-656

184-380

172-192

154-180

124-140

140-170

72-104

56-64

62-82

36-52

144-160

24-32

20-40

42-52

18-22

86-90

112-130

108-142

22-56

26-32

160-182

62-82

52-72

36-44

100-126

34-48

40-54

40-52

100-122

34-44

52-74

48-56

34-50

PGW

POW

POL

PPG

GL

Ta I(L)

Ta I(H)

30511

Ge I

Fe I

Tr 1

Cx I

Ta II

Ti II

Ge II

Fe II-

Tr II

Cx II

Ta II (L

Ta MI (W)

Ti MI

Ge III

Fe !l

Tr 111

Cx TI

Coxala 1

AW/AP

AW/AL

PSW I/PSL I

POL/HII

AW/POL

PSL VOL I

OL VOL II

H

48

26

60

124

74

28

34

22

62

34

78

damaged

2.23

259)

2.34

1.20

ZEZS

1.75

1.00

P

48-66

26-30

56-62

56-72

120-140

64-76

24-30

26-38

20-24

50-62

32-40

68-86

44-56

22-30

14-18

36-52

26-38

54-64

44-56

48-56

20-26

12-16

34-44

30-48

56-70

14-22

2.03-2.26

2.40-3.09

2.22-2.75

1.07-1.29

1.93-2.32

1.55-1.89

0.78-0.83

54 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

TABLA 2

METRIC DATA FOR BERONIUM SORAYAE N.SP., LARVA, HOLOTYPE (H) AND PARATYPES (P)

H P P H E P

Length 576 640 336 PGL damaged 42 38

of body

Width 320 328 192 PGW 56 54 60

of body

L 202 208 184 POW 26 damaged 24

W 178 190 166 POL 90 90 82

AW 142 134 136 PPG 70 2 70

PW 174 164 180 GL 130 106 126

AMB 82 82 80 TEAJnE 66 66 64

AP 32 32 28 Ta IH 24 28 24

MA 104 102 96 101)1 32 36 32

LN 46 damaged 92 Ge I 20 20 18

ASB 174 184 154 Ecil 48 54 50

PSB 28 24 30 15711 42 36 34

AM 30 damaged 34 (xl 76 76 68

AL 32 30 28 Ta II 44 48 44

PL 18 20 18 Ti II 28 32 26

SE dam. damaged dam. Ge II 16 18 14

MS 150 130 128 Fe II 38 34 30

SB 140 132 128 Tr II 40 42 34

DS damaged 30-64 30-62 Cx II 54 60 52

OS damaged 30 28 Ta MI L 46 44 48

PSW I 192 180 170 Ta MI W 60 S6 S6

PSL I 82 68 70 Ti IM 22 20 18

OW I damaged 78 76 Ge III 16 16 12

OLI damaged 250 dam. Fe II 36 32 34

PSW II 120 damaged 106 Tr HI 40 38 34

PSL II damaged dam. 30 Cx III 52 60 2

OW II 60 , 44 St damaged 26 30

OL II 60 a dam. AW/AP 4.43 4.19 4.44

PSW II 100 E 104 AW/AL 4.44 4.47 4.86

PSL MI 36 E 34 PSW I/PSL I 2.34 2.65 2.43

OW HI 66 y Ye POL/OL MI 1.50 - 1.14

OL III 60 252 72 AW/POL 1.58 1.49 1.66

PSW I

PSL I

OW I

OLI

PSW II

PSL II

OW II

OL II

PSW HI

PSL MI

OW III

OL III

PGL

116

134

136

28-64

32

174

74

90

S6

112

32

62

68

120

36

86

84

36

Haitlinger: New larval mites ectoparasitic on carabids

SUMATRA (6 SPECIMENS) AND MADAGASCAR (PM)(2 SPECIMENS).

PS

404-704

208-408

180-198

164-184

138-150

160-180

74-84

28-32

98-114

36-44

160-190

20-24

42-44

32-38

14-16

100-116

124-146

128-144

20-74

30

172-202

72-82

80-100

54-60

112-126

36-40

54-68

74

106-114

36-44

78-94

80-90

28-32

PM

616

324

218

180

142

170

104

32

108

52

190

28

40

dam.

18

dam.

136

32-70

28

192

84

92

dam.

120

42

66

74

116

40

dam.

84

30

TABLE 3

METRIC DATA FOR BERONIUM LUBOMIRAE N. SP., LARVA, HOLOTYPE (H), PARATYPES (PS) FROM

PM

92

324

202

180

142

174

104

dam.

PGW

POW

POL

PPG

GL

Ta IL

Ta 1H

Ti 1

Ge I

Fe I

Tr 1

Cx I

Ta II

Ti IM

Ge II

Fe II

Tr Il

Cx II

Ta MI L

Ta MI W

Ti IM

Ge III

Fe II

Tr Il

Cx III

StI

AW/AP

PSW I/PSLI

POL/OL II

AW/POL

PSL TOL I

OL VOL Il

H

44

24

102

88

124

70

28

40

24

52

40

76

48

30

20

48

40

54

S0

60

22,

16

40

42

S4

32

4.73

239

1.21

1.39

1E52

0.82

PS

44-52

22-26

102-114

74-86

110-134

60-70

26-30

34-38

22-24

50-60

36-40

70-80

48-56

28-32

16-20

44-52

34-44

52-56

40-46

62-64

18-22

14-16

38-48

30-40

50-52

24-34

4.69-5.14

AOS

1,26-1,34

1.23-1.41

1.20-1.41

0.73-0.81

104

146

PM

52

24

110

dam

142

dam.

55

S6 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

TABLE 4

METRIC DATA FOR BERONIUM VERONICAE N. SP., LARVA, HOLOTYPE (H) AND PARATYPES (P).

H P P H E 12

Length OZ 816 776 PGW 52 32 54

of body

Width 256 432 damaged POW 30 36 30

of body

L 182 184 192 POL 62 76 damaged

W 166 164 184 PPG 70 2 72

AW 124 128 138 GL 104 damaged 124

PW 156 154 178 TaIL 76 78 80

AMB 62 64 66 Tal H 24 damaged 28

AP 46 44 46 Til 44 44 48

MA 100 102 100 Ge I 26 26 28

LN 46 damaged 44 ECH 62 68 72

ASB 160 160 166 Tr] 34 36 42

PSB 22 24 26 Cx I 68 damaged 74

AM 30 26 30 Ta II 60 58 60

AL 44 44 S0 Til 36 32 36

PL 40 40 42 Ge II 20 20 18

SE 104 damaged dam. Fe II 46 42 52

MS 134 136 136 Tr II 40 damaged 40

SB 124 124 138 Cx II 60 damaged 60

DS 40-60 50-60 50-66 Ta MI L damaged S4 60

OS damaged 32 34 Ta II W damaged 46 SO

PSW I 184 188 200 Ti 1 32 damaged 30

PSIÉI 106 114 120 Ge III 16 damaged 16

OW I 56 60 60 Fe III S6 damaged S6

OLI 36 44 44 Tr MI 42 damaged 44

PSW II 120 114 130 Cx HI damaged damaged 64

PSL II 40 42 40 Coxala 1 8 damaged 12

OW II S6 54 66 AW/AP 2.69 ZAS] 3.00

OL II 54 60 dam. AW/AL 2.82 2.91 2.76

PSW III 100 110 dam. PSW I/PSL I 1.73 1.65 1.67

PSL HI 48 48 dam. POL/OL MI 1.03 1.22 -

OW II 48 48 dam. AW/POL 2.00 1.68 -

OL III 60 62 66 PSL 1/OL I 2.94 2.59 2.73

PGL S0 48 S0 OL VOL IT 0.67 0.73 =

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 57-67

GENERIC KEY TO CHILEAN JUMPING PLANT-LICE (HOMOPTERA: PSYLLOIDEA)

WITH INCLUSION OF POTENTIAL EXOTIC PESTS

DANIEL BURCKHARDT

1

ABSTRACT

An illustrated key is provided for the identification of adult psyllids at generic and, for Trioza, at

species group level. The key covers taxa presently known to occur in Chile as well as exotic species

which may be introduced on cultivated plants.

Two new combinations are proposed: Katacephala stigmaticalis (Blanchard, 1852) comb. n. (from

Notophorina) and Katacephala longiramis (Burckhardt, 1987) comb. n. (from Notophorina).

RESUMEN

Se entrega una clave ilustrada para la identificación de adultos de los géneros de psílidos presentes

en Chile y en el caso de Trioza, hasta el nivel de grupos de especies. La clave cubre además aquellos

taxa exóticos que afectan plantas cultivadas y que podrían ser susceptibles de introducción en Chile.

Se proponen dos nuevas combinaciones: Katacephala stigmaticalis (Blanchard, 1852) comb. n. (de

Notophorina) y Katacephala longiramis (Burckhardt, 1987) comb. n. (de Notophorina).

INTRODUCTION

Psyllids (Homoptera, Psylloidea) constitute a

small group of sternorrhynchous insects with a

high degree of host specificity. Contrary to

the related aphids, psyllids are generally of lit-

tle economic importance. There are, however,

some species which are major pests of crop

plants. In Europe, Asia and North America

psyllids are among the most important pests of

cultivated pears (Atger, 1982; Burckhardt é

Hodkinson, 1986; Burts, 1970; Burts Hill,

1987; Hodkinson, 1984; Wildbolz, 1992), and

in Asia and Africa they are responsible for big

losses in citrus cultures (Anonymous, 1988;

Burckhardt € Martinez, 1989; Husain « Nath,

'Muséum d' histoire naturelle, Case postale 6434, CH-

1211 Geneve 6, Switzerland.

Received: July 27, 1993. Accepted: September 9,

1993)

1927; Mead, 1976, 1977; Van den Berg, 1990;

Van den Berg dz Fletcher, 1988).

In Chile Cacopsylla bidens (Sulc) has been

reported from three localities (as Psylla piri-

cola (sic!), Psylla simulans and Cacopsylla

bidens) but apparently without causing notice-

able damage (González, 1981, 1985, 1989;

Hodkinson, 1989). Russelliana solanicola oc-

curs locally as a minor pest on potatoes

(Burckhardt, 1987a; Tuthill, 1959), and Het-

eropsylla obscura Muddiman, Hodkinson

Hollis (recorded as Heteropsylla texana) was

observed to produce severe damage to

Prosopis chilensis (Klein Koch é Campos,

1978; Muddiman et al., 1992).

Most of Chile*s crop plants are exotic and

some of them are parasitised in their native

range by psyllids (table 1) (Miller, 1956;

Pflugfelder, 1941). These species constitute a

potential threat to cultures in Chile.

The identification of psyllids is difficult for

the non-specialist as most published keys

work only for local faunas or small sub-groups

within psyllids. The temperate South Ameri-

can psyllids were revised by Burckhardt

58 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

(1987a, b, 1988) who provided keys to species

for the adults. It is, however, not possible to

identify potential exotic pests with these keys.

The present paper intends to fill this gap. As

most of the potential pests belong to exotic

genera (or species groups in Trioza), the pre-

sent key is only to genera and, in Trioza, to

species groups. The larvae are not treated

here as they are dealt with on a world base by

White 8: Hodkinson (1985).

MATERIAL AND METHODS

The present key includes the native taxa re-

ported by Burckhardt (1986a, b, 1987a, b,

1988, 1992), Burckhardt $: Lauterer (1989),

González (1989) and Klein Koch € Campos

(1978) and, marked with an asterisk, potential

pests listed in table 1; taxa not reported from

Chile are indicated with a cross. Literature re-

cords are supplemented with data from mate-

rial represented in the collections of the

Muséum d'histoire naturelle, Genéve

(MHNG), the Natural History Museum, Lon-

don (BMNH), the Museo Nacional de Historia

Natural, Santiago (MNHN), the Universidad

de Concepción (UNCO) and the Servicio

Agrícola y Ganadero, Santiago (SAGS).

Figure 1. Nomenclature of veins and cells of forewing.

To facilitate the use of the key to non-spe-

cialists, most of the characters are illustrated.

The terminology of the wing venation is ac-

cording to Fig. 1. The head width is measured

across the complex eyes at the widest dis-

tance. Male and female terminalia are illus-

trated in Figs. 40, 41.

A

E

e

e E y

QT

U

TNA

SAR

[A

YUI |

¿ES

EE y

Gm pla A VI

Y NESARA

ORINA

a | (e

8

Figures 2-8. 2. Homotoma ficus (Linnaeus). 3, 4, 6. Calo-

phya rubra (Blanchard). $5. Notophorina falcata

Burckhardt. 7. Notophorina lanfrancoae Burckhardt. 8.

Trioza testacea (Blanchard). 2, 3. Antenna. 4, 5. Male

terminalia, in profile. 6, 7, 8. Forewing.

Burckhardt: Generic key to Chilean jumping plant-lice 59

The classification follows Burckhardt

(1987a, b, 1988) with the exception of the No-

tophorina stigmaticalis group which is trans-

ferred here to the genus Katacephala

Crawford (Hodkinson, 1991). The following

two new combinations are proposed:

Katacephala stigmaticalis (Blanchard, 1852)

comb. n. (from Notophorina) and Katacephala

longiramis (Burckhardt, 1987) comb. n. (from

Notophorina).

KEY TO ADULTS

1 Antennal flagellar segments flattened, bearing long

black setae (Fig. 2). On Ficus carica (Moraceae).....

uan Homotomidae: Homotoma*t

- Antemnal flagellar segments more or less cylindrical,

without long black setae (Fig. 3). ............... 2)

2 Basal portion of aedeagus straight (Fig. 4). Forewings

with costal break and pterostigma; anal break in dis-

tance of apex of vein Cu¡p (more than half distance be-

tween apices of veins Cuj, and Cub); cell cuja larger

than m¡+2; vein M+Cu¡ shorter than R, and vein Cu;

less than twice as long as Cub (Fig. 6). On Schinus

spp. (Anacardiaceae)....... Calophyidae: Calophya

- Basal portion of aedeagus U-shaped (Fig. 5). Fore-

wings with different combination of characters ..... 3

3 Forewings (Fig. 7) with vein R+M+Cu bifurcating

into R and M+Cu;; if trifurcating then anal break close

to apex of vein Cujp and metabasitarsus with 1 or 2

black spurs. Costal break and/or pterostigma often de-

O A ollo ae e Psyllidae ....4

- Forewings (Fig. 8) with vein R+M+Cu; trifurcating

into R, M and Cu; or, rarely, bifurcating into R+M and

Cuy, or R and M+Cuy; anal break distant from apex of

vein Cu¡p (more than a third distance between apices

of veins Cuj, and Cup); costal break and pterostigma

always absent. Metabasitarsus without black spurs. ...

o A Triozidae 723

4 Head (Fig. 9) with large anterior flattened lobes en-

closing median ocellus which is, therefore, visible only

in dorsal view. On Olea europaea (Oleaceae) .......

A ta Liviinae: Euphyllura*+

- Head different, either regularly rounded anteriorly

(Fig. 39), or with genal processes (Figs. 37, 38); me-

dian ocellus visible in frontal and/or ventral view. ...S

5 Terminal antennal setae strongly unequal in length;

one long and curved, the other one very short, shorter

than three times its diameter (Figs. 10, 35). Pro and

mesobasitarsi short, in profile subglobular. On intro-

duced Myrtaceae, often Eucalyptus Spp...........-

oo a NA Spondyliaspidinae ...... 6

- Terminal antennal setae subequal or, if unequal, then

long seta straight and short seta longer than three times

its diameter. Pro and mesobasitarsi elongate, in profile

tubular. On indiginous Myrtaceae or other host fami-

16

Figures 9-16. 9. Euphyllura olivina (Costa), head dorsal

view. 10. Spondyliaspidini gen. sp., antennal segment 10.

11. Camarotoscena speciosa (Flor). 12. Notophorina

vitripennis Burckhardt, metatibia and metatarsus. 13. No-

tophorina fusca Burckhardt, apex of metatibia. 14. Aciz-

zia uncatoides (Ferris é Klyver). 15. Psyllopsis

fraxinicola (Forster), inner view of male paramere. 16.

Psyllopsis fraxini (Linnaeus), female subgenital plate in

ventral view, sclerite spread. 11, 14. Male terminalia, in

profile.

60 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figures 17-20. 17. Katacephala stigmaticalis (Blanchard).

18. Notophorina atra Burckhardt. 19. Connectopelma

perelegans (Blanchard) 20. Russelliana solanicola Tuthill.

17, 18. Male terminalia, in profile. 19, 20. Forewing.

6 Metacoxae with tubercular meracanthus (Figs. 42, 43).

Mesotibia with an outer apical comb of small bristles

(Fi2 30) 2er loca Ea le bale Ctenarytaina*t

- Metacoxae angular, without meracanthus. Mesotibiae

without outer apical comb of bristles ..............

Is other genera of Spondyliaspidinae*j

7 Head without genal processes (Fig. 39) .......... 8

- Head with genal processes (Fig. 38) ............ 10

8 Metacoxae narrow and elongate, without horn-shaped

meracanthus; trochanteral cavity with weakly

sclerotised tubercle (Figs. 44, 45). On Schinus spp.

(Anacardiacca Rhinocolinae: Tainarys

- Metacoxae with horn-shaped meracanthus; trochanteral

cavity without tubercle (Figs. 46, 47)............ 9

9 Antennae shorter than head width. Male parameres

simple (Fig. 11). On Populus spp. (Salicaceae) ......

E o cd Paurocephalinae: Camarotoscena*j

- Antennae longer than head width. Male parameres bi-

fid. On Prosopis tamarugo and chilensis (Fabaceae) . .

o o ES Ciriacreminae: Heteropsylla*

10 Metatibiae with distinctly grouped apical spurs and

often with conspicuous basal spine. Metabasitarsi usu-

ally with 2 black spurs (in Acizzia with 1)........ 11

- Metatibiae without conspicuous basal spine, or if a

conspicuous spine is present (Fig. 12) then apical tibial

spurs forming an incomplete crown (Fig. 13), or

metabasitarsi without black Spurs ............... 13

Genal processes shorter than half vertex length. Male

proctiger with large posterior lobe and lamellar process

(Fig. 14). On Australian Acacia SPD..............

e a e Acizziinae: ÁAcizzia*

- Genal processes longer than half vertex length. Male

proctiger simple. On cultivated Rosaceae and Eri-

A ado Dojo ESyllnaciae 12

12 Antennae shorter than twice head width ............

1

—

- Antennae longer than twice head width ............

AN NS A A oo Psylla*+

13 Metabasitarsi with 2 spurs (rarely only 1). Metatibiae

with an incomplete crown of evenly spaced apical

spurs (Fig. 13). Fore margin of vertex not strongly

bulecdato a a Diaphorininae ..... 14

- Metabasitarsi usually without spurs; if with two spurs

then either metatibiae with grouped apical spurs, or

fore margin of vertex strongly bulged (Fig. 38) ......

era. Aphalaroidinae ..........17

14 Antennae much shorter than head width. Forewings

strongly widening towards apex, bearing a dark pattern

consisting of well-defined spots. Aedeagus 3-seg-

mented. On Citrus spp. (Rutaceae). .... Diaphorina*;

- Antennae usually much longer than head width

(slightly shorter in some species of the Notophorina

fusca group). Forewings oval in outline; pattern not

consisting of well-defined spots. Aedeagus 2-seg-

Mente a ea Il rt El la o CARE E 15

15 Male parameres in profile hammer or axe-shaped (Fig.

15). Female subgenital plate in ventral view incised

apically (Fig. 16). On Fraxinus spp. (Oleaceae). .....

O O OO iO OO e 83S DS Psyllopsis*

- Male Parameres in profile lamellar (Figs. 17, 18). Fe-

male subgenital plate pointed apically ........... 16

Burckhardt: Generic key to Chilean jumping plant-lice 61

Figures 21-27. 21. Connectopelma perelegans

(Blanchard). 22. Panisopelma penai Burckhardt. 23.

Panisopelma fulvescens (Blanchard). 24. Prosopidopsylla

striata Burckhardt. 25. Russelliana solanicola Tuthill. 26.

Neopelma longiforceps Burckhardt. 27. Zonopelma aus-

tralis Burckhardt. 21, 23, 24. Head, dorsal view. 22.

Pronotum, dorso-frontal view. 25-27. Male terminalia, in

profile.

16 Mesoscutum along mid-line more than 1.5 times as

long as mesopraescutum. Male proctiger with poste-

rior angular lobes (Fig. 17). On Myrtaceae and Aster-

ACC MA A E IA Katacephala*

- Mesoscutum along mid-line less than 1.4 times as long

as mesopraescutum. Male proctiger almost straight to

rounded or lobed posteriorly, never angular (Fig.18).

On Myrtaceae, Nothofagus spp. (Fagaceae), Escallonia

spp. (Escalloniaceae), Misodendrum spp. (Misoden-

draceae), Laureliopsis philippiana (Laureliaceae) and

Eucryphia cordifolia (Eucryphiaceae) .............

o e SO Re LA qe Notophorina

17 Forewings with cross-vein r-m, or with punctiform or

partial fusion of veins Rs and M¡y2 (Fig. 19)...... 18

- Forewings with veins Rs and M1+2 separate (Fig. 20)

no sor anne rc Oo AR 19

18 Pronotum flattened laterally. Vertex strongly bulged

anteriorly on either side of median suture (Fig. 21).

Metabasitarsi usually with black spurs (reduced in C.

topali) On Rhamnaceae............ Connectopelma

- Pronotum with two lateral tubercles on either side

(Fig. 22). Vertex forming short anterior lobes (Fig.

23). Metabasitarsi without spurs. On Zygophyllaceae

o de ¿o A Panisopelma

19 Vertex flat, subrectangular (Fig. 24). On Fabaceae . ..

lc ao e LL Prosopidopsylla

- Vertex trapezoidal, strongly bulged anteriorly on either

sido mudan (ito 20

20 Genal processes as long as (Fig. 38) or longer than ver-

tex along mid-line. On Colliguaja integerrima

(Euphorbiaceae) and Kageneckia spp. (Rosaceae)....

A e. Sphinia

- Genal processes shorter than vertex along mid-line. ...

2

—

Male parameres short and broad; distal segment of

aedeagus with short lateral appendages (Fig. 25). On

Fabaceae, Asteraceae, Solanaceae, Nolanaceae and

METDENACCA A edo O Russelliana*

- Male parameres lamellar, slender; distal segment of

aedeagus elongate, without or with small appendages

nfthe middle Elie 22 22

22 Male parameres in profile widened in apical half; dis-

tal segment of aedeagus without humps in the middle

(Fig. 26). Valvulae 2 in female straight (Fig. 28). On

Baccharnis pps terrace a Neopelma

- Male parameres in profile tapering towards apex; distal

segment of aedeagus with small humps in the middle

(Fig. 27). Valvulae 2 in female weakly upturned

E SADA URI e Zonopelma

23 Forewings with subacute apex and often with charac-

teristic brown or black streak along veins R+M+Cu, R

and Ri; vein R+M+Cu; not strictly trifurcating (Fig.

30). Head with globular eyes and broadly separated,

blunt genal processes (Fig. 31). Metatibiae often with

more than 1 outer apical spur. On Psidium guajava

(Miyrtace a e ae ds does Triozoida*

- Forewings usually with strict trifurcation. Head either

with strongly adpressed eyes or with subacute conical

genal processes. Metatibiae with only 1 outer apical

SPUBAI. Eh E NE. A dO 24

62 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

28

22,

Figures 28-34. 28. Neopelma longiforceps Burckhardt. 29.

Zonopelma australis Burckhardt. 30, 31. Triozoida lim-

bata (Enderlein). 32. Egeirotrioza ceardi (Bergevin),

metatibial apex. 33, 34. Trioza testacea (Blanchard). 28,

29. Valvulae 2 and 3. 30. Forewing. 31. Head, dorsal

view. 33. Male terminalia, in profile. 34. Female termi-

nalía, in profile.

24 Outer apical metatibial spur on a large claw-like tu-

bercle (Fig. 32). On Populus spp. (Salicaceae)......

AN NN O Egeirotrioza*t

- Outer apical metatibial spur not on large claw-like tu-

Derclerusetid a e 25

A A UI Ad MES e EN 26

- Genal processes longer than half vertex length . ...

TILOZA PDA ALA IAS IEA 29

26 Metatibiae with 1+3 black apical spurs. Aedeagus

long and very slender; apex of distal segment very

long and narrow, often with ventral, subapical teeth

(Fig. 33). Female terminalia often long and styliform

(Fig. 34). On Baccharis spp. and other Asteraceae ...

a ds AA Trioza baccharidis group

- Metatibiae with 1+2 black apical spurs. Aedeagus not

extremely long and slender; apex of distal segment

short and broad. Female terminalia never styliform. ..

AA A AS AI 27

27 Antennae completely black or, at most, with light seg-

ment 3. Polyphagous on herbaceaous plants .........

SE A AOS Trioza nigricornis group*t

- Antennal segments 3 to 6 light................ 28

28 Forewings shorter than 2.9 mm. On Solanum tubero-

sum, Lycopersicon esculentum and Lycium andersoni

(Solanaceac. E ie Paratrioza*j

- Forewings longer than 2.9 mm. On Asteraceae ......

A la sa Ma: Trioza hastata group

29 Metatibiae with 1+3 black apical spurs; if with only 2

inner spurs then they are separated by more than 1 spur

nt a a AS EN 30

- Metatibiae with 1+2 black apical spurs, the inner ones

separated by less than 1 spur length............ SH

30 Vein Rs of forewings concavely arched towards fore

margin, ending distinctly proximal to line joining api-

ces of vein Rs and Cua. On Citrus spp. (Rutaceae)...

e ls SUE SAA T. erytreae group*;.

- Vein Rs of forewings straight or long, sinuous, ending

on or distal to line joining the apices of veins Rs and

Cuja. On Berberis spp. (Berberidaceae), Asteraceae

AM T. berberidis group

Forewings unevenly rounded apically. On Ficus

carnica(Moracc aio T. buxtoni group*;

- Forewings acute or subacute apically ........... 32

32 Vein Mi+2 of forewings more than twice the length of

vein M3+4; fore margin of forewings strongly arched,

hind margin only weakly curved. Male proctiger with

large posterior lobes. Female proctiger long. On

Rubus spp. (Rosaceae)........ T. trisignata group*t

- Vein Mi+2 of forewings less than twice as long as

M3+4; fore margin of forewings only slightly stronger

curved than hind margin. Hind margin of male proc- |

tiger weakly produced or straight. Female terminalia

ShOntira rd. AN 33

33 Distal segment of aedeagus with two bent tubular proc-

esses in the middle. Oligophagous on Chenopodiaceae

Ss e A e T. chenopodii group*

- — Distal segment without processes in the middle ... 34

34 Surface spinules present in all cells of forewings,

forming large fields. Oligophagous on Apiaceae .....

As A a T. apicalis group*t

3

-—

Burckhardt: Generic key to Chilean jumping plant-lice 63

- Surface spinules largely reduced in apical half of fore-

Wines On Lauraceae T. ocoteae group

ACKNOWLEDGEMENTS

I thank C. Vergara, P. Mondaca (SAG, Santia-

go), A. Camousseight and M. Elgueta

(MNHN, Santiago) for inciting the present pa-

per. They, R. Muñoz (SAG, Santiago), D.

Hollis (BMNH, London), J. Arias, V. Jerez

and T. Cekalovic (Universidad de Concep-

ción) kindly made material available for study

which is gratefully acknowledged. M. Elgueta

provided valuable comments on an earlier ver-

sion of the manuscript. Thanks are also due to

J. Wúest, G. Roth and the late J. Chevelu

(MHN, Geneve) for technical assistance with

the illustrations, and D. Lanfranco (Universi-

dad Austral, Valdivia), J. Petersen (Viña del

Mar) and the staff of many National Parks for

help in the field, and CONAF for granting per-

mits to collect in National Parks.

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Figures 35-41. 35-37, 41. Ctenarytaina eucalypti (Maskell). 38. Sphinia sp. 39, 40. Tainarys sordida Burckhardt. 35. An-

tennal segment 10. 36. Mesotibia. 37-39. Head, dorsal view. 40. Male terminalia, in profile. 41. Female terminalia, in pro-

file. Scales in um: 35: 10; 36: 20; 37-39, 41: 100; 40: 50.

Burckhardt: Generic key to Chilean jumping plant-lice 65

Figures 42-47. Metacoxae. 42, 43. Ctenarytaina eucalypti (Maskell). 44, 45. Tainarys sordida Burckhardt. 46, 47. Sphinia

sp. 42, 44, 46. Lateral view. 43, 45, 47. Postero-lateral view. Scales in um: 42-45: 50; 46, 47: 100.

66

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TABLE 1

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1992. Drei Blattsaugerarten auf unseren

Obst- und Weinbau,

PSYLLID SPECIES DEVELOPING ON SUBTROPICAL AND TEMPERATE CROP PLANTS

Rutaceae: Citrus spp.

Rosaceae: Pyrus spp.

Rosaceae: Malus spp.

Rosaceae: Prunus spp.

Rosaceae: Rubus spp.

Ericaceae: Vaccinium spp.

Moraceae: Ficus carica

Oleaceae: Olea europaea

Oleaceae: Fraxinus excelsior

Lauraceae: Persea spp.

Lauraceae: Laurus nobilis

Diaphorina citri Kuwayama

Trioza erytreae (del Guercio)

(T. erytreae group)

Cacopsylla pyri (Linnaeus)

Cacopsylla pyricola (Fórster)

Cacopsylla bidens (Sulc)

Oriental, Saudi Arabia, Brazil,

Honduras

Afrotropical

Palaearctic

Holarctic, ?Argentina

Europe, Chile

Cacopsylla permixta Burckhardt ££ Hodkinson Middle East

Cacopsylla fera (Baeva)

Central Asia

Cacopsylla pyrisuga (Forster) Palaearctic

Cacopsylla mali (Schmidberger) Holarctic

Cacopsylla costalis (Flor) Europe

Cacopsylla pruni (Scopoli)

Psylla trimaculata Crawford

Trioza tripunctata Fitch

(T. trisignata group)

Trioza trisignata Lów

(T. trisignata group)

Cacopsylla myrtilli (Wagner)

Homotoma ficus (Linnaeus)

Trioza buxtoni Laing

(T.buxtoni group)

Euphyllura olivina (Costa)

Euphyllura straminea Loginova

Euphyllura phillyreae Fórster

Psyllopsis fraxinicola (Forster)

Trioza perseae Tuthill

(T.ocoteae group)

Trioza anceps Tuthill

(T. ocoteae group)

Trioza alacris Flor

Europe, Middle East

Nearctic

Europe

Holarctic

Palaearctic

Middle East

West Palaearctic

West Palaearctic,

introduced into North

America, Australia,

Chile (UNCO data)

Peru

Mexico

originally Palaearctic,

now cosmopolitan,

Argentina, Brazil,

Chile

Burckhardt: Generic key to Chilean jumping plant-lice 67

Myrtaceae: Psidium guajava Katacephala psidii (Tuthill)

Triozoida limbata (Enderlein)

Peru, Chile (SAGS; MHNG data)

Panama, Mexico, Trinidad,

Ecuador, Colombja,

Brazil, Bolivia, Peru,

Chile, Argentina

Myrtaceae: Eucalyptus spp Ctenarytaina eucalypti (Maskell)

Spondyliaspidini gen. spp.

Australia, Europe, North America, Africa

Australia, North America

Fabaceae: Prosopis spp. Heteropsylla obscura Muddiman, Hodkinson

82 Hollis

Cacopsylla pulchella (Low)

Peru, Chile

Fabaceae: Cercis siliquastrum West Palaearctic

Fabaceae: Acacia spp. Acizzia uncatoides (Ferris €: Klyver) Australia, New Zealand,

Mediterranean, USA,

Chile

Australia, New Zealand,

Mediterranean

Acizzia acaciaebaileyanae (Froggatt)

Anacardiaceae: Schinus molle Calophya schini Tuthill Peru, Chile, California,

New Zealand

Salicaceae: Populus spp. Palaearctic

North Africa, Middle East

Camarotoscena speciosa (Flor)

Egeirotrioza ceardi (Bergevin)

North America

Solanaceae: Solanum spp.

Solanaceae: Capsicum spp.

Apiaceae: Daucus carota

oligophagous on Chenopodiaceae

polyphagous on herbaceous plants

Paratrioza cockerelli (Sulc)

Russelliana solanicola Tuthill

Paratrioza cockerelli (Sulc)

Russelliana capsici Burckhardt

Trioza apicalis Forster

(T. apicalis group)

Trioza chenopodii Reuter

(T. chenopodii group)

Trioza nigricornis Forster

(T. nigricornis group)

Trioza tremblayi Wagner

(T. nigricornis group)

Triosa trigonica Hodkinson

(T. nigricornis group)

Peru, Bolivia, Chile, Argentina

North America

Argentina, Brazil

Palaearctic

Palaearctic, Eastern USA

(MHNG data), Chile

(MHNG data)

Palaearctic

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Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 69-76

GLYPTOSCELOIDES DENTATUS, A GENUS AND SPECIES OF EUMOLPINAE NEW TO

CHILE (COLEOPTERA: CHRYSOMELIDAE)

INGOLF S. ASKEVOLD' AND R. WILLs FLOWERS

2

ABSTRACT

Study of known South American genera described in the tribe Eumolpini, sections Edusites and

lIphimeites strongly suggests that specimens of a previously unidentified species of Eumolpinae

represent an undescribed genus and species. The genus Glyptosceloides is described as new, from

Chile, including the new single species. G. dentatus.

RESUMEN.

El estudio de los géneros descritos en la tribu Eumolpini, secciones Edusites e Iphimeites, indica que

los especímenes de una especie no identificada hasta ahora representan un género y especie no

descritos. Se describe un nuevo género para Chile, Glyptosceloides, con una sola especie G. dentatus,

n. Sp.

INTRODUCTION

The Eumolpinae of Chile comprise 11 or 12

genera, including about 27 described species

(Askevold, in prep. a £b). At least 5 of these

genera are endemic to this narrow country,

which is bounded by desert to the north, ex-

treme cold to the south, and the Andes to the

east. Two of these genera, Stenomela Erich-

son and Hornius Fairtnaire, are perhaps the

most primitive of the subfamily, making the

fauna a rather unique and limited one. Chil-

ean species of genera that are not endemic to

Chile are generally single members of groups

that are widespread in the Neotropics, some

even extending into North America.

Over the years that Jan Bechyné published

on Eumolpinae (for references, see Seeno ef

al., 1976), a large number of genera and spe-

'Entomology-Biological Control.

?Plant-Insect Interactions, Division of Agricultural Sci-

ences, Florida A ££ M University, Tallahassee, FL 32307-

2926, USA.

(Received: November 3, 1993. Accepted: February 18,

1994)

cies were described, rendering study of the

Neotropical Eumolpinae a difficult task. It is

difficult to rationalize description of new gen-

era in this context. Numerous taxonomic prob-

lems persist, well illustrated by the genus

Jansonius Baly (Askevold € LeSage, 1990).

ISA has examined the type specimens of all

species of Chrysomelidae described from

Chile, and RWF is familiar with almost all

New World genera of Eumolpinae. Therefore,

despite existing taxonomic confusion among

Neotropical eumolpines, we are confident that

the genus and species described herein must

be distinct from all other Neotropical Eu-

molpinae, readily recognizeable among Chil-

ean and other Neotropical genera.

Terminology of female genitalia follows

Lindroth (1957); that for male genitalia fol-

lows Askevold 4 LeSage (1990).

GLYPTOSCELOIDES, Askevold and Flowers,

new genus.

Type species: Glyptosceloides dentatus

Askevold and Flowers.

70 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figures 1-2: Habitus photograps of G. dentatus: (1) dorsal

aspect, (2) lateral aspect.

Etymology: the genus is named in reference

to the genus Glyptoscelis Dejean, the Chilean

species of which, G. pulvinosus (Blanchard),

G. dentatus resembles in size, colour and

elytral rugosity.

Diagnosis and Description: pygidum with in-

complete, broad, shallow median furrow, the

furrow flat (Fig. 10); profemur with large

acute ventral tooth at midlength (Fig. 5); tib-

lae multicarinate, the carinae prominent but

incomplete; tibiae strongly flared at apex;

prothorax with distinct ocular lobes, lobes

projecting ventrally and forming discontinuity

with prosternum (Figs. 3, 6); prothorax, head

and mandibles of male enlarged. Because the

genus is monobasic, description of G. dentatus

provides other specific structural details.

GLYPTOSCELOIDES DENTATUS

Askevold and Flowers, new species.

(Figs. 1- 17)

Type specimens: Holotype S (Museo Na-

cional de Historia Natural, Santiago): "Hun-

garian Soil-Zool. Exp. CHILE: Prov.

Coquimbo, Socos, 12.X1.1965 / Nr. P-B. 113

leg. Mahunka". Of the remaining 142 speci-

mens examined, listed below, 113 are desig-

nated paratypes.

Type Locality: Socos, in the province of Co-

quimbo.

Etymology: The species is named in reference

to the broad profemoral tooth.

DESCRIPTION:

Length, pronotum and elytra 4.50-6.00 mm

(83), 5.00-6.80 mm (99 ); width at humeri

2.30-3.00 mm (89 9), 2.80-3.60 mm (99).

Body (Fig. 1,2) obovate; head, pronotum,

elytra, undérside bronzish, bronzish-black or

metallic green; femora and tibiae entirely pale

reddish to entirely bronzish-black or metallic

green, tarsi dark with metallic sheen, in most

specimens individual antennomeres, tar-

someres, femora and tibiae reddish at extreme

base.

Head with labrum apically emarginate, with 4

or 5 subapical setae placed in emargination.

Frons and clypeus densely, coarsely punctate,

punctures confluent in some specimens to

form longitudinal rugae laterally and on ver-

tex; surface between punctures coarsely mi-

croreticulate; clypeus emarginate apically,

with setae at outer angle of emargination; each

puncture of frons with short white prostrate

seta. Eyes elongate-oval, weakly emarginate

next to antennal insertion.

Antennae with scape irregularly globose;

pedicel subglobose, slightly shorter than

scape, distinctly shorter than segment 3; seg-

ments 1-4 reddish brown, remaining segments

blue-black, all segments with scattered white

setae; 3-6 elongate, slightly wider at apices; 7-

10 flattened, asymmetrical and subserrate, dis-

tinctly wider at apices, 7 and 8 broader than

following segments; 11 narrower, spindle-

shaped, apically conical.

Mouthparts. Maxillary palp with apical seg-

ment spindle-shaped. Mandibles large, robust

(larger in 9'8'), laterally uniformly curved,

apical teeth broad, slightly acute, with broad

occlusal edge; with outer surface coarsely

densely punctate and with long white prostrate

setae.

Prothorax (Fig. 3,6) subquadrate, L/W = 0.62

- 0.76 (38), 0.56 - 0.70 (98 ); disc medially

finely punctate, punctures separated by several

Askevold $: Flowers: New genus and species of Eumolpinae from Chile.

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11

Figures 3-11: Structures of G. dentatus: (3) prosternum (arrow is point of measuring width); (4) claw; (5) left profemur,; (6)

prothorax of 9'; (7) left 2 mesotarsus; (8) left Í mesotarsus; (9) apical two abdominal sternites of d; (10) pygidium of O;

(11) tegmen of aedeagus. Abbreviations: AD = apical declivity; CX1 = procoxal cavity; EPM = proepimeron; EPS; =

proepisternum; MF = median furrow; OL = ocular lobe; PLD prosternal-ocular lobe discontinuity.

71

1/92 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

times their diameters, laterally with mixture of

punctulae and very coarse punctures, sepa-

rated by approximately their own diameters;

surface |between punctures coarsely mi-

croreticulate to shagreened in some speci-

mens, especially laterally, disc laterally

somewhat swollen, obscuring lateral margin

(38), or not swollen (99). Lateral margins

with distinct uniform bead, evenly curved

(dorsal view), directed strongly obliquely

downward from posterior to anterior angles;

anterior angle directed forward; basal margin

with uniformly broad, flattened marginal bead,

bead with single row of shallow punctures;

each angle with single erect short seta in large

puncture, anterolateral seta situated sublater-

ally on anterior bead. Proepisternum with an-

terior margin convex, forming ocular lobes,

ventrally distinctly raised and discontinuous

with anterior margin of prosternum; surface

coarsely punctate, each puncture with long

seta. Proepimeron glabrous, coarsely punctate,

punctures separated by distance greater than

their diameter, intervening surface mi-

croreticulate to shagreened. Prosternum (Fig.

3) anteriorly recessed for reception of base of

head; anterior margin prominently raised as

slender high margin, surface markedly exca-

vate behind margin; entire surface with long

slender erect setae; broad, 1.10 X diameter of

procoxa, widened behind coxae; longer than

either mesosternum or metasternum.

Mesosternum flat, broad, slightly narrower

than prostemum, width = 0.80 X width of mid-

dle coxa, densely and moderately coarsely

punctate, with moderately long prostrate white

setae. Metasternum short, slightly swollen

anterior to hind coxae, only slightly longer

than mesosternum; densely and moderately

coarsely punctate, with moderately long pros-

trate white setae.

Legs (Fig. 4,5,7,8) robust, densely punctate

and sparsely covered with long prostrate setae,

surface alutaceous. Femora strongly swollen

in middle, entirely pale reddish brown to en-

tirely infuscate or with only extreme base red-

dish; profemora with large ventral tooth at

mid-length (Fig. 5). Tibiae gradually widening

toward apex and strongly expanded in apical

fourth; protibiae somewhat curved, wider in

apical half; tibiae multicarinate, slightly to

moderately sulcate between carinae, and with

long setae arranged linearly in sulci, meso-

and metatibiae somewhat flattened on anterior

surface. Tarsi densely and uniformly pilose

beneath; basal tarsomere of all legs expanded

(especially d'S'), those of fore- and middle

legs (Fig. 8) more strongly so (almost as wide

as long) than those on hind legs; second tar-

somere broadly triangular, with acute apicolat-

eral angles; third tarsomere shorter and

narrower than second, deeply bilobed, with

lobes rather slender. Claws robust, with broad,

basal, slightly acute tooth (Fig. 4).

Elytra coarsely, irregularly punctate on disc;

sparsely to densely, coarsely transversely ru-

gose, especially laterally and at midlength;

most punctures separated by distance equal to

or slightly greater than their diameters in most

specimens; surface between punctures mi-

croreticulate, punctures toward apex becoming

regular, forming striae; intervals convex to

costate, with regular, single row of punctulae,

punctulae in apical area bearing very short

seta; humeri prominent, rounded; basal calli

weakly developed; postbasal depression ab-

sent. Sides subparallel, slightly converging;

apex conjointly broadly rounded. Basal mar-

gin moderately to markedly costate, costa

obliterated toward scutellum. Epipleuron nar-

row, acutely raised, slanting inward, tapering

evenly from base to apex, finely setose api-

cally.

Scutellum triangular, base 1.40 X length; with

punctures absent to several, fine to coarse.

Abdomen with basal segment slightly longer,

remaining segments subequal in length; sur-

face densely and moderately coarsely punc-

tate, with moderately long prostrate white

setae, surface between punctures finely alu-

taceous or microreticulate. Apical sternum

with shallow subapical median depression in

both sexes, apical margin shallowly emargi-

nate medially in both sexes; male with median

subapical area glabrous, microreticulate, im-

punctate, reddish brown (Fig. 9); female with

similar but smaller median subapical area; 4th

Askevold 8: Flowers: New genus and species of Eumolpinae from Chile. 73

AN

SU

Figures 12-17: Genitalia of G. dentatus: MALE: (12) apical view of median lobe; (13) lateral view of median lobe; (14) in-

ternal sac sclerite (dorsal view). FEMALE: (15) ventral aspect of segment VIII, hemisternites and gonocoxae; (16) dorsal

aspect of hemistemites and gonocoxae; (17) spermatheca. Abbreviations: ALS apicolateral setae of hemisternites; AM =

apicomedian setae of hemisternites; AS apical setae of gonocoxa; A8 = apodeme of sternum VIII; B = baculum; BH = basal

hood; BLS = basolateral setae of gonoxa; BMS = basomedian setae of gonocoxa; BS = basal spur; CS = coxostylus; GC =

gonocoxae, HS = hemisternites of segment XI; IR = internal lateral rod; OS = orificial sclerite; PP = dorsal portion of hem-

isternites of segment XI; SBF = subbasal fenestra; SD = spermathecal duct (about half its length illustrated); SG = sper-

mathecal gland; SOS = suborificial sclerites; TG = tegmen.

74 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

segment with broad lateral depression, extend-

ing onto 3rd segment in some specimens.

Pygidium (Fig. 10) with longitudinal median

groove broad, shallow, flat, becoming obsolete

on apical one-fourth; its lateral margin slightly

acutely projecting inward; with subbasal bis-

inuate line, and subapical biarcuate line de-

marcating slight declivity, apical declivous

area coarsely punctate, smooth between punc-

tures; apical margin crenulate; lateral margin

carinate.

Sexual dimorphism. Female like male except

as follows: head smaller, mandibles smaller

and less robust; pronotal disc laterally not so

swollen, the lateral margin entirely visible

from above; basal tarsomeres of all legs not

expanded (as in Fig. 7); apical sternum me-

dially punctate and microreticulate, not so

deeply impressed.

Genitalia and associated structures. MALE.

(Fig. 11-13) Median lobe (Fig. 13) in general

shape typical of Eumolpinae; with long,

lightly scierotized basal hood, lacking distinct

apodemes; with subbasal fenestra; with promi-

nent basal spurs; tegmen robust, fused along

midline (Fig. 11); internal sac with pair of

slender suborificial sclerites (Fig. 12) and ba-

sal irregularly shaped sclerite complex (Fig.

14; apical when endophallus inflated); flagel-

lum extremely long, rather abruptly thickened

at base. FEMALE. (Fig. 15-17) Sternum

VII with short basal apodeme; sternum other-

wise only with poorly sclerotized apicolateral

area; apical margin with numerous sparse ex-

tremely long setae; hemisternites with cluster

of apical setae; paraprocts separated into pair

of slender dorsal rods with cluster of apicome-

dian setae; baculum distinct, apical, almost as

long as gonoxa; gonocoxae large, with apical

ring of setae, with subapical sclerotized cylin-

der and basolateral unsclerotized area, with

cluster of 6-7 basolateral setae, with cluster of

6-7 basomedian setae; coxostyli distinct, with

several distinct long setae. In addition to these

structures that are normally found in the fe-

male external genitalia, there is also a pair of

very slender, oblique, internal rods (Fig. 15);

we do not know with what these are homolo-

gous and merely use the term internal rods for

convenience. Spermatheca (Fig. 17) with

elongate, transverse meshes; slightly con-

stricted at ramus; spermathecal duct attached

basally, very elongate, forming few loose ir-

regular coils (only half illustrated).

Intraspecific variation. Specimens are metal-

lic green or bronze; legs vary in color from en-

tirely reddish to entirely metallic; punctures of

the pronotum vary in size, and the intervening

surface various from distinctly microreticulate

to coarsely shagreened; punctures of the head

vary in density and the extent to which they

coalesce to form rugae.

Distribution. Specimens have been examined

only from the Coquimbo Region, Chile. No

specimens have been found collected outside

of Chile.

Material Examined. Chile. Región de Co-

quimbo: Prov. Elqui: Depto. Ovalle, Tres

Cruces EP Reed (CAS 3), 4-XII-37 EP Reed

(CAS 1); Cuesta S. Cruz [may be Santa Cruz

mineral, near Tres Cruces] 1938 Reed (USNM

2; CAS 2); La Serena 1.Nov.1957 LE Peña

(CMNH 1); Coquimbo XI-61 (OHIO 2; ISAC

1); Vicuña 15.X.1983 L. Peña (ISAC 1), no

date Reed leg. (USNM 4); S[an]. Isidro (CHIL

1); Dept. La Serena, Las Cardas Sepa

Nov.1947 EP Reed (CAS 1), 3 December 1949.

EP Reed (CAS 12). Prov. Limarí: Tr[anque].

Recoleta, R. Hurtado 2.Nov. 1957 LE Peña:

(CMNH 1; ISAC 1); Socos 12.X1. 1965 Ma-

hunka P-B Nr. 113 (ISAC 6; RWF 4; TMB 54;

CHIL 3); Rio Guatulame 13-XI-1961 LE Peña

(BMNH 1); Manquehua, Majada Blanca 1.64

(OHIO 5; ISAC 2; SMC 1); San P. de Quillez

S.W. Punitaqui 15.Nov.1961 LE Peña (CMNH

2; ISAC 1). Prov. not determined: Incienso

[=Flourensia thurifera] El Pepe 7-XI-44

(CHIEMACASA:

Additional specimens found in press, not

seen by authors:

Prov. Elqui: Totoralillo 14.X.91 E Arias

(CHIL 1); Las Cardas, 40 km S la Serena:

4.XXI52 R Wagenknecht, sobre Flourensia

thurifera ("incienso” (CHIL 22); 746 [hand-

written Philippi label], 1089 Myochrous

Askevold € Flowers: New genus and species of Eumolpinae from Chile. 18

flourensiae / Ph. 1209. Coq[uimbo]. [hand-

written Philippi label] (CHIL 3). Prov. Li-

marí: Socos 9.XI.91 T Fichet (CHIL 1); El

Divisadero (E Punitaqui) 23.XI.1971 G Rojas

(CHIL 1). Prov. Choapa: Conchalí (N Los

Vilos) 22.VII1.1984 G. Carrasco (CHIL 1).

Comparison with other genera.

Glyptosceloides was compared with various

other Neotropical genera of Eumolpinae. Eu-

rysarcus Lefévre, Vianeta Bechyné and

Prionodera Chevrolat bear considerable re-

semblance, but are evidently not congeneric.

Few genera of Neotropical eumolpines have

both enlarged mandibles and toothed pro-

femora, therefore Glyptosceloides is unlikely

to be confused with other genera.

Argoa. Argoa species compared were Á. rugu-

losa Lefevre and A. tibialis Chapuis. Of all

Neotropical eumolpine genera known to us,

Glyptosceloides appears most closely related

to Argoa, with which it shares the following

characters: 1) toothed profemora; 2) lateral ru-

gosities on elytra; 3) incomplete median

groove on pygidium; 4) sexual dimorphism in

enlargement of hind basitarsus; 5) sexual di-

morphism in shape of pronotum. Glyp-

tosceloides can be distinguished from Argoa

by the following combination of characters: 1)

body shape obovate (oval in Argoa); 2) mandi-

bles of males much larger than those of fe-

males (no sexual dimorphism in mandibles of

Argoa); 3) apical half of antennae subserrate

(submoniliform in Argoa).

Eurysarcus. Four species were compared with

G. dentatus: E. abiroides Lefevre, E. dejeani

Lefevre, E.foveicollis Leféevre and E. rufinus

Leféevre. They are similar to, in shape of the

pronotum; proepisterna forming ocular lobes;

markedly broadened basal pro- and mesotar-

somere of males; enlarged mandibles of

males; and broad and flat basal pronotal mar-

gin. They differ from Glyptosceloides in lack

of profemoral tooth; pygidial furrow deeper

and complete to the apical margin; elytra not

to hardly transversely rugose, with indistinct

to quite well developed costae laterally and on

declivity; tibiae enlarging apically but not so

markedly costate; basal pronotal margin not

punctate, surface laterally not shagreened be-

tween punctures; and larger in size.

Vianeta. Four species were compared with G.

dentatus: V. varians Bechyné, V. argentinen-

sis Bechyné, V. uberaba Bechyné and V. po-

doxenus Bechyné. They are similar to in the

toothed profemur; proepisterna forming ocular

lobes; raised anterior prosternal margin; and

transversely rugose elytra. Vianeta differs in

the complete and uniformly deep pygidial fur-

row; legs rufous in most specimens, basal tar-

someres not so expanded in males; mandibles

not enlarged in males; tibiae not carinate nor

sulcate nor widening toward the apex; profe-

mur not so robust; and more elongate, slender

body shape.

Prionodera. Four species were compared with

G. dentatus: P. bicolor (Olivier), P. lutea

Erichson, P. kirschi (Lefévre) and P. mar-

shalli Leféevre. This genus shares with Glyp-

tosceloides the toothed profemur and raised

anterior margin of the prosternum. Prionodera

differs in the complete lack of median furrow

of pygidium; proepisterna not forming ocular

lobes; pronotum, head and mandibles not en-.

larged in males; basal tarsomere only weakly

expanded in males, distinctly longer than

wide; and larger size and more elongate body

shape.

Among Chilean eumolpine genera, only

Dictyneis Baly (of authors) has toothed

femora; however, this genus belongs to the

Myochroites and is distinct in pygidial shape,

toothed lateral pronotal margin, vestiture

(scales) of the prothorax and elytra, tubercu-

late elytra and all femora toothed. Like Glyp-

toyceloides dentatus, One species of

Glyptoscelis in Chile has similarly trans-

versely rugose elytra; Glyptoscelis species,

however, have scales and setae covering the

entire beetle, lack the femoral tooth, and a less

well developed (to almost absent) pygidial fur-

row.

Placement of Glyptosceloides within Eu-

molpinae.

Reid (1993:61) noted that "at present it is im-

possible to define any suprageneric group of

the Eumolpinae to include all of its currently

76 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

included members." Similarly, it is not possi-

ble to ascertain which genera one should ex-

amine to determine the most appropriate

position of a new genus within the existing

classification; even some of the most distinc-

tive groups within the Eumolpinae are very

heterogenous assemblages (Askevold $ Le-

Sage 1990). Based on the classification of

Chapuis (1874; still the only one for the Neot-

ropical fauna) and which is used by Seeno and

Wilcox (1982), Glyptosceloides belongs in the

section Edusites of the tribe Eumolpini.

The characters of Edusites are proepisterna

forming ocular lobes, and elytra laterally ru-

gose. The only New World members of this

section are Argoa Leféevre, Auranius Jacoby,

and Tymnes Chapuis. Argoa, compared with

Glyptosceloides above, is unlikely to be con-

fused with it. Two other New World edusine

genera, Auranius and Tymnes, are readily dis-

tinguishable from Glyptosceloides. Auranius

is monotypic; A. robustus Jacoby is a large

weevil mimic from Brazil. Tymnes is a north-

ern genus, extending south only to Guatemala;

species of this genus lack both toothed pro-

femora and sexual dimorphism of the head.

Based on comparison with these genera, we

are confident that Glyptosceloides belongs in

this assemblage of taxa and that it is also dis-

tinct from them.

ACKNOWLEDGEMENTS

Research on the part of ISA was supported by

a Natural Sciences and Engineering Research

Council Post-Doctoral Fellowship to ISA and

by a grant (FLAX 91005) from CSRS, USDA

to Florida A£M University.

The following curators or private individu-

als are owed thanks for loaning specimens in

the collections under their care, referred in the

text above by the corresponding coden: Dr.

Mario Elgueta, Museo Nacional de Historia

Natural, Casilla 787, Santiago, Chile (CHIL );

Dr. Otto Merkl, Természettudományi

Múzeum, Állátra, Baross u. 13, H-1088 Buda-

pest, Hungary (TMB); Dr. David H.

Kavanaugh, Department of Entomology, Cali-

fornia Academy of Sciences, San Francisco,

CA 94118 (CAS); Dr. Richard E. White, Sys-

tematic Entomology Laboratory, U.S. National

Museum, NHB 168, Smithsonian Insitution,

Washington, DC 20560 (USNM); Dr. Sharon

L. Shute, Department of Entomology, British

Museum (Natural History), Cromwell Road,

London SW7 SBD England (BMNH); Dr.

Robert L. Davidson, Section of Invertebrate

Zoology, Carnegie Museum of Natural His-

tory, 4400 Forbes Ave., Pittsburgh, PA 15213-

4080 (CMNH); Dr. Charles Triplehom,

Department of Entomology, Ohio State Uni-

versity, 1735 Neil Ave., Columbus, OH 43210

(OHIO); Dr. Shawn M. Clark, Division of

Plant Industry, Dept. of Agriculture, State of

West Virginia, Charleston, WWV 25305 (SMC).

ISAC refers to the collection of 1.S. Askevold;

RWF refers to the collection of R.W. Flowers.

REFERENCES CITED

ASKEVOLD, I.S. in preparation a. An annotated list of the

Chrysomelidae known to occur in Chile (Coleoptera).

ASKEVOLD, I.S. in preparation b. A synopsis of the genera

of Eumolpinae and Lamprosomatinae of Chile, with

comments on higher classification of Eumolpinae and

taxonomic revisions of selected genera (Coleoptera:

Chrysomelidae).

ASKEVOLD, I.S. 82 L. LESAGE. 1990. A taxonomic revision

of the genus Jansonius Baly 1878: taxonomic confu-

sion and tribal reclassification (Coleoptera:

Chrysomelidae: Eumolpinae). Revista Chilena de En-

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CHApuis, F. 1874. Histoire naturelle des Insectes: Genera

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type species (Coleoptera: Chrysomelidae: Eumolpi-

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che Arbeiten aus dem Museum G. Frey 27:1-69

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 77-84

DESCRIPCION DE LOS ESTADOS INMADUROS Y NOTAS BIOLOGICAS SOBRE

METAPHATUS OCHRACEUS (LEPIDOPTERA: PALAEPHATIDAE), DEFOLIADOR DEL

NOTRO (EMBOTHRIUM COCCINEUM).

EuIs E. PARRA! Y HÉCTOR IBARRA-VIDAL

1

RESUMEN

Se describen la larva, pupa y capullo de Metaphatus ochraceus Davis, 1986. Esta polilla palefátida

esqueletiza las hojas del notro Embothrium coccineum F.R. et G. Forster (Protaceae) y presenta un

ciclo univoltino.

ABSTRACT

The larva, pupa and cocoon of Metaphatus ochraceus Davis, 1986, are described. This palaephatid

moth is a skeletonizes the leaves of "notro" Embothrium coccineum F.R. et G. Forster (Protaceae),

and presents univoltine cycle.

INTRODUCCION

La familia Palaephatidae fue descrita ini-

cialmente para incluir mariposas de América

austral (Davis, 1986) aunque también se ha

encontrado en Australia (Nielsen, 1987).

Davis (op. cit.) describe 28 especies en cinco

géneros para Chile y Argentina, entre los

cuales crea el género Metaphatus con 6 nuevas

especies: ¡chnius, cirrhus, sinuatus (para

Chile), spatulatus, ochraceus, y adustus (en

Argentina y Chile), de las que no se tienen

más antecedentes.

Durante excursiones de estudio de entomo-

fauna forestal realizados al sur del país se

recolectaron larvas que se hallaban defoliando

notro. El notro (Embothrium coccineum J.R.

et G. Forster), es un árbol endémico de Chile y

Argentina, que se distribuye ampliamente en-

tre la VII (35 S) y XII Regiones de Chile.

Dpto. de Zoología, Universidad de Concepción,

Casilla 2407, Concepción - Chile.

(Recibido: 19 de octubre de 1993. Aceptado: 15 de

marzo de 1994)

Además de un uso secundario en mueblería,

por su gran atractivo, tiene gran importancia

ornamental (Rodríguez. et al., 1983; Hoff-

mann, 1991).

El presente trabajo entrega los resultados de

nuestras observaciones sobre un microlepidóp-

tero asociado a este árbol, lo que completa una

notificación anterior de García et al. (1985).

MATERIAL Y METODOS

Entre 1988 y 1993, se recolectaron larvas de

M. ochraceus en el follaje de notros parasi-

tados en la localidad de Osorno, las que fueron

criadas en laboratorio y a partir de las cuales

se obtuvieron pupas y adultos. Para la nomen-

clatura de las estructuras larvales se siguió a

Sterh (1987). Todo el material recolectado se

encuentra depositado en el Museo de Zoología

de la Universidad de Concepción, Concepción

Chile (MZUC).

RESULTADOS

Larva (Figs. 1, 2, 4 y S). Largo máximo 9

mm; ancho máximo 1,2 mm. Color en vivo, -

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figura 1: Estructuras de la larva de M. ochraceus. a, cabeza en vista frontal (250 um); b, cabeza en vista lateral (250 um);

c, labro y complejo hipofaríngeo (100 um); d, complejo hipofaríngeo (100 um); c, palpo maxilar (30 um); y f, espincrete y

palpo labial (30 um). (Longitud de las escalas en paréntesis).

Parra e Ibarra-Vidal: Estados inmaduros de Metaphatus ochraceus 79

blanco amarillento, escudo cervical y pinácu-

las de color castaño oscuro.

Cabeza (Fig. la-f): Ancho máximo 1,1 mm);

alto máximo 1,4 mm. Color castaño oscuro,

semejante a la placa cervical. Area adfrontal

alcanza la hendidura cervical (Fig. la). AF2

se origina de la mitad dorsal del esclerito ad-

frontal, AF1 lo hace desde la región central.

P1 más cerca a AFl que P2 de AF2. A3 más

cerca a A2 que a S2 (Fig. la). Area ocular

(Figs. 1b y 4): ocelos unidos por una escleroti-

zación reniforme (Fig. 4), ocelo 1 dos veces

más grande que los restantes; S1 un tercio más

larga que S2; S3 pequeñísima, equidistante a

S2 y SS2. Labro (Fig. 1c), La2 tres veces más

larga que Lal y La3; M2 dos veces más larga

que M1 y 5 veces más larga que M3. Com-

plejo hipofaríngeo, palpo maxilar como lo

muestra la Figura 1d y e; palpo labial (Fig. 1f)

con el primer segmento 8 veces más largo que

el segundo; cerda del segundo segmento del

palpo labial dos veces más larga que la cerda

del primero. Espinerete (Fig. 1f) tubular, a-

bertura circular, subterminal y dorsal; placa

basal alcanza la mitad basal del espinerete,

con una cerda en su región distal; cerda es-

tipular pequeña, 1/4 de la cerda del segundo

segmento del palpo labial (Fig. 1f).

Tórax (Fig. 5): Protórax (1) con XD1, XD2,

D1, D2, SD1 y SD2 en la placa cervical, XD2

muy unida a SD1, equidistante a XD1 y D2;

SD2 equidistante entre SD1 y D2. Grupo

preespiracular trisetoso, L2 dos veces más

larga que L1 y 1/3 que L3; SV1 dos veces más

larga que SV2. Meso y metatórax (II) con Dl

y D2 y SD2 y SD1 unidas en pináculas; grupo

L trisetoso, con las cerdas dos veces más lar-

gas que en el protórax.

Abdomen (Fig. 5): Espuripedio (Figs. 2a-c)

presentes en los segmentos 3-6 y 10, crochets

triserial y triordinal en el lado externo (Fig.

2a), uniseriales y uniordinal en el lado interno

y asociados a un cojín (Fig. 2b); D1 anterodor-

sal a D2; SD1 anterodorsal al espiráculo, en

segmentos 3 al 9 dispuesta en una pinácula;

L1 ventro posterior al espiráculo, L2 ventro

anterior al espiráculo, L3 desplazada ventral-

mente, equidistante entre L1 y SV1; SV1 y

SV2 en el segmento 1-7 en un mismo

pináculo; segmentos 8 y 9 con V1 y SV bise-

tosa. “SD1l en segmentos 3 al 9, en un

pináculo. Noveno segmento abdominal con

cerdas L1 y L2 en un mismo pináculo, D2 an-

terodorsal a Dl.

Material examinado: (67 larvas) 3 larvas, 20

Enero, 1993; 5 larvas, 28 Enero, 1993; 3 lar-

vas, 7 Marzo, 1993; 3 larvas, 24 Abril, 1993;

1 larva, 20 Mayo, 1988; 3 larvas, 27 Mayo,

1988; 9 larvas, Mayo-Junio, 1988; 13 larvas,

12 Junio, 1993; 21 larvas, 1 Julio, 1992;-1

larva, Julio 1992; 1 larva, 18 Septiembre,

1992; 4 larvas, 24 Diciembre, 1992; Osorno,

Chile, recolectadas por H. Ibarra-Vidal.

(MZUC).

Pupa (Figs. 2d-f, 3a y 6). Largo máximo 5,5

mm; ancho máximo 1,3 mm. Color castaño

rojiza. Vista ventral (Fig. 6a), vertex liso; un

par de cerdas en el vertex; tres pares en la

frente entre los ojos; sin cerdas en el clípeo.

Mandíbulas visibles, trapezoidales, al lado y

bajo del labro. Palpos maxilares trapezoi-

dales, bajo los ojos. Palpos labiales presentes,

subiguales en longitud a la espiritrompa, la

cual rodea a los primeros. Coxas 1 triangu-

lares, patas 1 alcanzan la zona media de las

patas 2; patas tres visibles sólo en su región

terminal, alcanzan el .ercio anterior del cuarto

segmento abdominal. Ceratotecas, largas, al-

canzan el tercio terminal del cuarto segmento

abdominal. En vista lateral (Fig. 6b), el dorso

de los segmentos 2 al 10 con dos filas de espi-

nas cortas y setosas (Figs. 2d-f), las del

décimo segmento más fuertes y largas (Fig.

3a). Terminalia de la pupa macho tal como lo

muestra la Figura 3a.

Material examinado: (8 pupas) 2 pupas, 13

Enero, 1993; 2 pupas, 20 Enero, 1993; 4 pu-

pas, 30 Abril, 1993; todas fueron obtenidas de

larvas criadas en laboratorio (MZUC).

Capullo (Figs. 3b-d). Capullo formado por

una densa trama de tejido, abarca prácti-

camente toda la región media de la hoja. En la

región de salida del imago, presenta bajo una

capa plana de tejido dos láminas perpendicu-

lares que cierran la cámara pupal, dejando un

espacio (zona anterior de la pupa) entre éstas y

la primera.

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

A

AE

Figura 2. Estructuras de la larva y pupa de M. ochraceus. a-c, espuripedios: a (100 um) y b (30 um), vista ventral del espu-

ripedio del tercer segmento abdominal; y c, vista lateral externa del espuripedio del décimo segmento abdominal (200 um);

d-f, estructuras de la región dorsal de los segmentos 3-5: d, tergo de los segmentos 3-5 (1 mm); e, espinas de la región ante-

rior del tergo del 5to. segmento abdominal (200 um); y f, espinas de la región media del tergo del 5to. segmento abdominal

(150 um). (Longitud de las escalas en paréntesis).

Parra e Ibarra-Vidal: Estados inmaduros de Metaphatus ochraceus 81

Figura. 3. Estructura de la pupa y capullo en hoja de notro. a, terminalia de la pupa macho (300 um); b, capullo (2 mm); c,

efecto en la hoja por acción de la larva (1 mm); y d, trama del capullo (región de la cámara) (50 um). (Longitud de las esca-

las en paréntesis).

Hospedador: Embothrium coccineum F.R. et

G. Forster (notro, ciruelillo, fosforito, notru,

ciruelillu).

Distribución: Argentina: Esquel (alrededor de

los 43* lat. S); Chile: VII Región a XI Región

de Chile (35* - 44” S).

Notas biológicas.

El registro de los diversos estados de M.

ochraceus se presenta en la Figura 8, que in-

cluye tanto nuestras observaciones de terreno

y en laboratorio como los numerosos datos de

recolecta de adultos citados en Davis (1986).

Los adultos, que inician su período de vuelo

a fines de inviemo o en primavera, oviponen

en las hojas nuevas del notro y la larva de

primeros estadios dobla la hoja por el borde o

une dos que se sobreponen alimentándose en

la galería creada, esqueletizando la hoja en

sentido longitudinal (Fig. 3c). Larvas de to-

dos los estadios pueden hallarse prácticamente

desde septiembre hasta inicios del invierno

alimentándose de las hojas aún verdes.

82 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figura. 4. Area ocular de la larva de M. ochraceus. Cer-

das: S, ocelar; SS, subocelar.

La pupación no fue observada en terreno,

pero en laboratorio se produce desde fines de

junio, para lo cual construyen un capullo

blanco con una cámara anterior que ocupa el

tercio de su largo; este capullo lo adhieren

posiblemente a las hojas las cuales, al caer en

invierno, determinarían el desarrollo en el

suelo, emergiendo los adultos en la primavera

siguiente. No se determinó una función para

la cámara anterior.

Al parecer, las condiciones de laboratorio

influyeron en su desarrollo ya que se observó

una rápida pupación de las larvas de últimos

estadios cuando fueron mantenidas en cau-

tiverio. Esto explicaría las pupas y adultos

SV,

——=81, IES PE

4% “0

obtenidos en verano y en invierno, respecti-

vamente.

DISCUSION

Nuestros resultados representan los segundos

antecedentes sobre estados ¡inmaduros y

hospedador para la familia Palaephatidae. De

la otra especie que se tiene antecedentes, Se-

sommata holocapna, se conoce la larva halla-

da alimentándose de Diostea juncea, una

Verbenaceae. Para el único género de Austra-

lia (Azaleodes) no hay antecedentes sobre bio-

logía, lo único que se conoce de él es que se

encuentra asociado al bosque lluvioso y es-

clerófilo húmedo (Nielsen, 1987).

Davis (1986) menciona que a los adultos de

M. ochraceus se les ha encontrado asociados a

Nothofagus, pero ello se debe a la amplia dis-

tribución del hospedador, el que se halla aso-

ciado al bosque templado austral, al igual que

varias especies de notofagáceas.

El ciclo de vida parece ser monovoltino, sin

embargo, no fue posible determinar con

seguridad si en condiciones naturales se pro-

duce además otra generación durante el

período estival o si las larvas de primeros

estadios observadas corresponden a eclosión

diferencial.

Es probable que M. ochraceus se distribuya

más al sur de Chiloé, siguiendo a su

hospedador, pero es notable la falta de

1% q

—

ME : Da

— — > -Dy

a =. ; SS

Figura. 5. Quetotaxia de la larva de M. ochraceus. Cerdas: D, dorsal; L, lateral; SD, subdorsal: SV, subventral; V, ventral;

y XD, extradorsal.

Parra e Ibarra-Vidal: Estados inmaduros de Metaphatus ochraceus 83

Figura. 6. Pupa de M. ochraceus. a, en vista ventral; y b,

en vista lateral. Escala 1 mm.

recolección de material lepidopterológico

hacia la zona austral.

AGRADECIMIENTOS

A la Dirección de Investigación de la Univer-

sidad de Concepción, por su apoyo económico

a través del Proyecto 92.38.26-1. Al Laborato-

rio de Microscopía Electrónica de la Universi-

dad de Concepción por las fotografías del

presente trabajo. A Hipólito Rifo y José Bus-

tos por la figura del adulto y algunos de los

esquemas del presente trabajo, respecti-

vamente. A los dos revisores anónimos por

sus comentarios críticos y sugerencias.

LITERATURA CITADA

Davis, D.R. 1986. A New Family of Monotrysian Moths

from Austral South America (Lepidoptera: Palaephati-

dae), with a Phylogenetic Review of the Monotrysia.

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GARCIA, M.; CERDA, L.A.; AGUILAR, A.M. y MA.

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84 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

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ción, Concepción 408 pp.

Ss O N D

E Terreno Laboratorio

Figura. 8. Ciclo de vida de M. ochraceus. Los puntos y la flecha indican el periodo probable de inicio de la ovoposición

2

ie 2

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 85-97

LA FAMILIA AULACIDAE EN CHILE (HYMENOPTERA: EVANIOIDEA)

MARIO ELGUETA! Y DOLLY LANFRANCO?

RESUMEN

Se efectúa una revisión de las especies de Aulacidae presentes en Chile, entregándose una clave para

su reconocimiento. En Chile se encuentran Pristaulacus rubriventer (Philippi)», P. capitalis

(Schletterer), Aulacus braconiformis (Kieffer) y A. krahmeri n. sp. Se presentan redescripciones de

las especies previamente conocidas, se describe la nueva especie y se entregan figuras de diversas

estructuras morfológicas. Para cada una de las especies, se detallan los antecedentes biológicos

conocidos y su distribución geográfica.

ABSTRACT

A taxonomic revision and a key of the chilean species of Aulacidae is carried out. These species are:

Pristaulacus rubriventer (Philippi), P. capitalis (Schletterer), Aulacus braconiformis (Kieffer) and A.

krahmeri n. sp. Redescriptions of those previously known species, description of the new one, and

figures of morphological structures are presented. For each species known biological aspects and

geographical distribution are detailed.

INTRODUCCION

Aulacidae es una de las tres familias que com-

ponen la superfamilia Evanioidea, ha sido con-

siderada como una subfamilia de Evaniidae

(ej. Kieffer, 1912) o también de Gasteruptii-

dae (ej. Townes, 1950); en este caso se sigue

el criterio de Gauld < Bolton (1988) y Nau-

mann (1991), de considerarla como una enti-

dad de nivel Familia. Conjuntamente con

Evaniidae y Gasteruptiidae, comparten los

siguientes caracteres: antenas filiformes de

13-14 segmentos, pronoto llega hasta la tégula

y dorsalmente cubierto por un mesonoto de-

sarrollado, metanoto corto, presencia de celda

costal y lóbulo yugal en el ala anterior, gáster

inserto dorsalmente en el propodeo, que está

¡Sección Entomología, Museo Nacional de Historia

Natural, Casilla 787, Santiago - Chile.

“Instituto de Silvicultura, Universidad Austral de

Chile, Casilla 567, Valdivia - Chile.

(Recibido: 10 de febrero de 1994. Aceptado: 9 de Sep-

tiembre de 1994)

bien desarrollado, y por sobre el nivel de las

coxas posteriores (Crosskey, 1951; Naumann,

119911):

Aulacidae es una familia de distribución

mundial, con unas 150 especies. Sus repre-

sentantes son parasitoides de Coleoptera

xilófagos e Hymenoptera Symphyta (Gauld y

Bolton, 1988).

Entre los caracteres que definen a la familia

Aulacidae se citan: antenas insertas en línea

con el margen inferior de los ojos, de 13 seg-

mentos en los machos y 14 en las hembras;

venación alar completa, el ala anterior con dos

venas recurrentes; metaesterno con un proceso

bilobulado entre las coxas posteriores;

primeros dos tergitos del gáster fusionados;

ovipositor expuesto y la superficie interna de

las coxas posteriores con un surco que sirve de

guía para el uso del ovipositor (Townes, 1950;

Crosskey 1951; Naumann, 1991). Se les

puede reconocer por su parecido general con

Ichneumonidae, el ovipositor largo, el tórax

giboso en vista lateral y las propleuras proyec-

tadas anteriormente formando un cuello.

86 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

La familia está integrada por dos géneros,

ambos de distribución mundial (Townes,

1950; Croskey, 1953; Carlson, 1979). En la

actualidad se reconocen como nombres genéri-

cos válidos a Pristaulacus Kieffer y Aulacus

Jurine. Recientemente se ha propuesto un ter-

cer género: Panaulix Benoit, que incluye dos

especies de la región etiópica (Madl, 1990a).

Respecto de los antecedentes biológicos los

registros son escasos, sin embargo se indica

que son endoparasitoides (Gauld y Bolton,

1988) de insectos xilófagos, fundamental-

mente Coleoptera, Cerambycidae y Bupresti-

dae, e Hymenoptera, Xiphydriidae y Siricidae

(Townes, 1950; Croskey, 1951; Carlson, 1979;

Oehlke, 1983; Sedivy y Capek, 1988; Madl,

1990b).

En este aporte se describe una nueva espe-

cie y se entrega, mediante el estudio del mate-

rial reunido y tras una recopilación y análisis

de la información bibliográfica básica, claves

de identificación para los géneros y especies

presentes en Chile, redescripción de los taxa

previamente conocidos, algunas figuras expli-

cativas y los antecedentes biológicos obteni-

dos de las especies nativas. Se estima de

interés comunicar una revisión de la familia en

Chile, debido a su particular relación con in-

sectos xilófagos, ya que podrían tener cierta

importancia como controladores biológicos.

MATERIAL Y METODO

El material de insectos utilizado en este tra-

bajo provino de las siguientes colecciones par-

ticulares e institucionales:

Colección Ernesto Krahmer, Valdivia (EK),

Colección Miguel Cerda, Santiago (MC), Ins-

tituto de Entomología, Universidad Metropoli-

tana de Ciencias de la Educación, Santiago

(IEUM), Instituto de Silvicultura, Universidad

Austral de Chile, Valdivia (UACH), Museo

Nacional de Historia Natural, Santiago

(MNHN), Museum fir Naturkunde der Hum-

bolt-Universitát, Berlín (MNHU).

Para la observación y selección de los ca-

racteres usados en claves y descripciones, se

contó con una lupa estereoscópica NIKON

SMZ-1. Como apoyo complementario se rea-

lizaron preparaciones de diversas estructuras y

figuras. No se efectuó disección de coxa pos-

terior en el caso de Pristaulacus capitalis a fin

de no dañar el único ejemplar conocido

(Holotipo).

En la nominación de la morfología se siguió

a Gauld y Bolton (1988) y Naumann (1991).

En lo que se refiere a la puntuación del tegu-

mento, se siguió a Harris (1979).

RESULTADOS

En Chile se encuentran presentes los géneros

Pristaulacus y Aulacus. A la fecha se regis-

tran cuatro especies: P. rubriventer (Philippi),

P. capitalis (Schletterer), A. braconiformis

(Kieffer) y A. krahmeri n. sp., las cuales se en-

cuentran distribuídas entre la Región Metro-

politana (33 S) y X Región (40% S). Las

especies de Aulacus tienen como hospederos a

especies de Cerambycidae (Coleoptera).

CLAVE PARA TAXA DE AULACIDAE

PRESENTES EN CHILE

1 Uñas tarsales pectinadas; carena occipital pre-

sente; en vista lateral la cara dorsal y frontal del

lóbulo mediano del mesoscutum, forman un ángulo

menor de 90%; surco en cara interna de las coxas

posteriores de las hembras, ubicado en el tercio

posterior (Pristaulacus Kieffer) ............. 2

¡le Uñas tarsales simples, con un pequeño diente ba-

sal; carena occipital ausente; en vista lateral la

cara dorsal y frontal del lóbulo mediano del

mesoscutum no forman un ángulo, constituyendo

un borde redondeado; surco en cara interna de las

coxas posteriores de las hembras, ubicado en la

zonamedial(Aulacus Uno 3

2(1) Abdomen rojo; ala anterior con una mancha negra

transversa en la porción apical; valvas del oviposi-

torde coloración pardolrojiza e.

ds sia P. rubriventer (Philippi)

2 Abdomen negro; alas completamente hialinas; val-

vas del ovipositor de coloración negruzca. ......

e tele estee Es P. capitalis (Schletterer)

3(1”) Alas hialinas, con área costal ahumada y

pterostigma negro; cabeza (en vista lateral) con

frente redondeada; zona frente-vértex convexa; an-

tena con segmentos del flagelo de coloración negra

y amarillenta (o bien antena negra con algunos

segmentos de coloración amarillenta); segundo y

tercer segmentos de los tarsos posteriores siempre

de coloración amarillenta ..... A. krahmeri n. sp.

3, Alas ahumadas, con pterostigma y zona inme-

diatamente posterior anaranjadas; cabeza con

frente proyectada, formando una carena transver-

sal; zona frente-vértex aplanada; antena anaran-

jada, aunque escapo, pedicelo y flagelómeros

Elgueta y Lanfranco: La familia Aulacidae en Chile 87

terminales de coloración negra; tarsos posteriores

ECO o ra cie A. braconiformis (Kieffer)

PRISTAULACUS Kieffer

Aulacostethus Philippi, 1873: 302 (nec Water-

house, 1864; nec Uhler, 1871).

Pristaulacus Kieffer, 1900: 813,

Otras sinonimias: véase Townes, 1950: 88-

89; Carlson, 1979: 1112.

Diagnosis: Carena occipital presente; uñas

tarsales con a lo menos dos dientes; surco en

coxas posteriores de las hembras, ubicado en

el tercio posterior; cara frontal y dorsal del

mesoscutum, en vista lateral, formando un án-

gulo menor de 90".

Observaciones: Kieffer (1900) establece el

género Pristaulacus, basado en un caracter

único: uñas tarsales "pectinadas" (3 dientes en

la figura que entrega); con posterioridad es-

tablece como caracteres de su género, la pre-

sencia de dos celdas cubitales (actualmente

conocidas como submarginales), además de la

presencia de dientes en las uñas tarsales (Kief-

fer, 1902).

PRISTAULACUS RUBRIVENTER (Philippi)

(Figs. 1, 5, 8 y 12)

Aulacostethus rubriventer Philippi, 1873: 302,

Lám.I, Fig. 4; Townes, 1950: 88.

Aulacus rubriventer: Schletterer, 1889: 523;

¡ette 1912: 3 (clave). 2143 Hedicke,

1939: 18.

Aulacus rubriventer: Kieffer, 1902: 12.

Pristaulacus rubriventer: Carlson, 1979:

ia:

Diagnosis: Hembra. Coloración del cuerpo

negra; gáster rojizo, excepto una pequeña área

basal negra; antena negra (de acuerdo a

Philippi, 1873); cabeza en vista lateral con la

zona de transición vértex-frente suavemente

convexa, casi aplanada; genas, surco suban-

tenal y mandíbulas de color pardo-rojizo;

mesoscutum con carenas transversales, irregu-

larmente espaciadas; alas hialinas, las anterio-

res con una pequeña mancha transversal

negruzca en el ápice y con el pterostigma ne-

gro.

Redescripción: Cabeza con clípeo, área fron-

tal, zona malar y región ocelar con puntuación

profunda, densa e irregular (14X); vértex tam-

bién con puntuación irregular, aunque en

menor densidad; genas con puntuación pro-

funda y muy dispersa, lo cual les hace tener un

aspecto brillante: surco subantenal rudimen-

tario, pero bien definido, con escasa pun-

tuación; pilosidad corta, dispersa y difícil de

ver a 14X, testácea, más evidente y densa en

vértex, genas, área malar, zona subocular y

áreas anterolaterales de la frente; occipucio

con pilosidad más densa y larga; carena oc-

cipital presente, aunque débilmente insinuada

en su porción dorsal. Coloración general ne-

gra, con las genas, surco subantenal y

mandíbulas de color rojizo. Frente con dos

depresiones suaves en su región central, leve-

mente convergentes anteriormente, las cuales

hacen aparecer una débil protuberancia cen-

tral. Ocelos posteriores separados del anterior

por una distancia similar a su diámetro, los

primeros separados de los ojos por aproxi-

madamente 1,25 veces su diámetro; ocelo an-

terior ubicado en una depresión irregular.

Antenas negras (Philippi, 1873); escapo

corto y grueso, con puntuación similar a la del

vértex, pedicelo aproximadamente la mitad de

largo y grueso que el escapo; primer

flagelómero casi tan largo como escapo y

pedicelo juntos, y del grosor de este último;

segundo flagelómero más de dos veces el

largo del primero y de similar grosor; de

acuerdo a Philippi (1873), tercero un poco más

corto que el cuarto y los siguientes decre-

ciendo en tamaño (en el único ejemplar exami-

nado sólo se conserva una parte de una de las

antenas).

Cabeza en vista lateral con dorso convexo

(Fig. 1); en vista dorsal, ancho máximo de la

cabeza, posterior a ojos, menor que el ancho

máximo del tórax.

Mesoscutum con margen anterior casi recto,

con fuertes carenas tranversales, en su área

medial las anteriores mas alzadas, evidentes

en la línea media y notaulis y proyectadas

hasta las parapsis, notaulis más profundos que

la línea media; líneas admedianas ausentes.

88 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

En vista lateral, mesoscutum con caída brusca

formando con su cara dorsal un ángulo menor

de 90% (Fig. 1). Mesoescutelo también con

carenas transversales. Propodeo con pun-

tuación profunda de tipo areolada-rugosa; con

algunos pliegues transversales ubicados ante-

riormente a la inserción del gáster, distancia

del margen anterior del propodeo a la inser-

ción del gáster, mayor que el ancho del orifi-

cio de inserción.

Bordes laterales del tórax con puntuación

desde el tipo foveado-rugosa a areolado-ru-

gosa, mostrando carenaciones transversas,

especialmente en las depresiones y zonas de

contacto entre piezas; pronoto con puntuación

simple, gruesa y dispersa, dándole aspecto

brillante, en la mayor parte de la superficie.

Ancho máximo del tórax mayor que la mitad

de su longitud (Tabla 1).

Coxas con puntuación menos densa que en

el resto del cuerpo, algo más evidente y con-

centrada en las áreas posterolaterales; coxas 1

y 2 sin estriaciones, coxas 3 con pequeñas

áreas con estriaciones. Cara interna de las

coxas posteriores con carenas transversas en la

zona pósteroventral; surco en cara interna ubi-

cado hacia el tercio posterior, recto, superfi-

cial en su parte superior y profundizándose

hacia la parte ventral, con su borde posterior

muy notorio (Fig. 5).

Fémures pardo-rojizos en su parte basal,

con escasa puntuación y con pilosidad corta

dorsalmente; tibias con pilosidad más densa

en toda su superficie, las anteriores y medias

arqueadas con un diente en su ápice externo,

tibias posteriores notoriamente engrosadas a

partir del quinto basal; primer tarsito más

largo que los siguientes en conjunto; uñas con

tres dientes.

Gáster rojizo, excepto una pequeña área ba-

sal negra, la cual es más extensa dorsalmente

y presentando ahí estriaciones longitudinales;

en vista lateral el gáster es de similar longitud

que el tórax (Tabla 1); primeros dos tergitos

desprovistos de pilosidad y con zona de fusión

débilmente notoria (60X), sólo en áreas late-

rales; restantes con pilosidad corta, muy dis-

persa.

Alas hialinas; las anteriores con una

pequeña mancha transversal ahumada, ubi-

cada apicalmente, con 2 celdas submarginales

cerradas, segunda vena radio-medial trans-

versa insinuada en su mitad posterior, longitud

de la primera vena medio-cubital transversa

mucho mayor que el trazo de R+M entre án-

gulo ántero-apical de la primera celda discoi-

dal y ángulo pósterobasal de la segunda celda

submarginal (Fig. 8); alas posteriores con 2

hamulis. Longitud del ala anterior, mayor que

la longitud del ovipositor (Tabla 1).

Ovipositor pardo-rojizo, con estriaciones (o

carenas) débiles en su contorno apical,

difíciles de observar a 60X (Fig. 12); valvas

pardo-rojizas con zona apical negruzca.

Macho, biología y hospederos: Desconoci-

dos.

Distribución geográfica: Región Metropoli-

tana (zona andina de Santiago: Philippi, 1873)

y VIIT Región (Cobquecura).

Material examinado: 1 hembra sin pata ante-

rior izquierda y antena derecha, con antena

izquierda incompleta y sin algunos tarsitos, de

VIII Región: Ñuble, Cobquecura, 11-1971, P.

Ramírez coll.

Este ejemplar, con alas derechas montadas

en tarjetas, al igual que pata posterior

izquierda y cuatro primeros segmentos de la

antena izquierda, es designado Neotipo

(MNHN); esto debido a que el ejemplar que

sirviera de base a la descripción de Philippi se

da por destruido, sobretodo considerando que

no se encuentra (Camousseight, 1980) en la

institución en la cual trabajó hasta su muerte,

ni tampoco en la Cornell University, en la cual

se encuentran depositados en la actualidad al-

gunos de los tipos de especies de Hymenop-

tera, descritas por Philippi, como por ejemplo

aquellos de Xiphydriidae (Hoebeke, 1980).

PRISTAULACUS CAPITALIS (Schletterer)

(ETANOL)

Aulacus capitalis Schletterer, 1889: 520-521,

Fig. 138.

Pristaulacus capitalis: Kieffer, 1902: 12;

Kieffer, 1912: 381 (clave), 405; Hedicke,

1939: 6.

Elgueta y Lanfranco: La familia Aulacidae en Chile 89

Diagnosis: Hembra. Coloración del cuerpo,

incluido gáster, negra; antenas negras; cabeza

negra, en vista lateral con zona de transición

vértex-frente, convexa; mesoscutum con care-

nas transversales finas, en mayor densidad que

P. rubriventer y uniformemente distribuidas;

alas completamente hialinas, pterostigma

pardo negruzco.

Redescripción: Cabeza con puntuación fina,

densa y uniformemente distribuída (14X), un

poco mas dispersa en área malar, dándole un

aspecto mas brillante, tegumento con microes-

cultura; genas desprovistas de puntuación en

el área inmediatamente cercana al borde poste-

rior del ojo; surco subantenal rudimentario,

puntuado y con pilosidad bastante mas larga

que la de la frente y vértex; pilosidad de co-

loración clara, corta y densa, apreciable a

14X, apegada al tegumento en vértex y frente,

mas larga en el área anterior y en genas, en

esta última zona algo semierecta, carena oc-

cipital desarrollada, claramente definida en

toda su extensión. Frente con tenue carena

longitudinal medial. Ocelos posteriores

separados del anterior por una distancia clara-

mente menor que su diámetro, los primeros

separados de los ojos por aproximadamente

1,25 veces su diámetro.

Antenas negras, escapo corto y grueso, pun-

tuado, con leve tonalidad pardo-rojiza,

pedicelo tan largo como el escapo pero la mi-

tad de su grosor; primer flagelómero tan largo

como escapo y pedicelo en conjunto, del

grosor de este último; segundo flagelómero

cerca de 2,2 veces mas largo que el primero,

similares en grosor; tercero 0,8 veces el largo

del segundo y 1,25 veces más largo que el

cuarto, los siguientes decreciendo en longitud;

flagelómeros 5% al 12* algo aplanados, leve-

mente arqueados del 3” al 8*.

Cabeza en vista lateral (Fig. 2) con convexi-

dad dorsal mayor que P. rubriventer; ancho

máximo de la cabeza, en vista dorsal y poste-

rior a ojos, menor que el ancho máximo del

tórax.

Mesoscutum con margen anterior (vista

dorsal), casi recto, con carenas transversales

evidentes tanto en su línea media como en no-

taulis, proyectadas hasta las parapsis, las care-

nas de desarrollo uniforme y regularmente

espaciadas; notaulis mas profundos que la

línea media; líneas admedianas débilmente in-

sinuadas. En vista lateral mesoscutum con

caída brusca, formando con su cara dorsal un

ángulo menor de 90* (Fig. 2). Mesosoescutelo

también con carenas transversales, aunque

bastante mas débiles. Propodeo con pun-

tuación tipo areolada-rugosa, menos profunda

que en P. rubriventer, con algunos pliegues

transversales ubicados anteriormente al orifi-

cio de inserción del gáster y siguiendo su con-

torno; distancia del margen anterior del

propodeo a la inserción del gáster, mayor que

el ancho del orificio de inserción.

Bordes laterales del tórax con puntuación

desde el tipo foveado-rugosa a areolada-ru-

gosa, más fina, superficial y densa que en P.

rubriventer, con carenas en las depresiones y

zonas de contacto entre piezas; pronoto den-

samente puntuado, de aspecto opaco a simple

vista, la puntuación fundamentalmente del tipo

areolado-rugosa. Ancho máximo del tórax

menor que la mitad de su longitud (Tabla 1).

Coxas 1 con puntuación fina, superficial y

dispersa, coxas'2 y 3 con suaves estriaciones

transversas, más o menos uniformemente dis-

tribuídas. Cara interna de las coxas posterio-

res con estriaciones aún más débiles que en el

resto de su superficie; surco ubicado en el

quinto posterior, recto, notorio en toda su ex-

tensión, menos profundo en su mitad superior,

con borde posterior muy notorio.

Fémures pardo negruzcos, con puntuación

muy fina y superficial, y pilosidad corta

apegada al tegumento, los posteriores de as-

pecto suavemente estriados transversalmente;

tibias con pilosidad más larga, las anteriores y

medias con un diente en su ápice externo, las

posteriores engrosadas a partir del quinto ba-

sal; primer tarsito más largo que los siguientes

en conjunto; uñas con 3 dientes.

Gáster negro, en vista lateral de similar

longitud que el tórax 1 (Tabla 1); primeros dos

tergitos desprovistos de pilosidad y con el área

de fusión débilmente notoria en toda su exten-

sión (60X); restantes con pilosidad corta,

densa, de coloración clara.

Alas hialinas, venas y pterostigma pardo-

negruzco; las anteriores con 2 celdas submar-

ginales cerradas; segunda vena radio-medial

transversa, insinuada en la mayor parte de sus

90 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

2/3 posteriores; longitud de la primera vena

medio-cubital transversa mucho mayor que el

trazo de R+M entre ángulo ánteroapical de la

primera celda discoidal y ángulo póstero-basal

de la segunda celda submarginal (Fig. 9); alas

posteriores con 2 hamulis. Longitud del ala

anterior mayor que la longitud del ovipositor

(Tabla 1).

Ovipositor pardo-rojizo, con finas carenas

transversales en el ápice (60X), en posición

dorsal y una más desarrollada en su cara ven-

tral, a la altura del inicio de las carenas dor-

sales (Fig. 13); valvas negruzcas.

Macho, biología y hospederos: Desconoci-

dos.

Distribución geográfica: Región Metropoli-

tana (Santiago).

Material examinado: Holotipo (MNHU)

hembra con los siguientes datos: etiqueta

verde, subcuadrada, manuscrita "Santiago/de

Chili/Puelma"; rectangular, anaranjada e im-

presa "Type"; rectangular blanca e impresa

"21858"; rectangular, blanca con ribete negro,

manuscrita "Pristaulacus/capitalis Schlett.";

rectangular crema e impresa "Zool. Mus/Ber-

lín". Falta primera pata derecha (excepto coxa

y trocanter); antena derecha con sólo los

primeros 5 segmentos y antena izquierda mon-

tada en tarjeta de cartulina.

AULACUS Jurine

Aulacus Jurine, 1807: 89.

Neuraulacinus Kieffer, 1910: 350; Kieffer,

1911: 216-217.

Otras sinonimias: Véase Townes, 1950: 113;

Carlson, 1979: 1114.

Diagnosis: Carena occipital ausente; uñas tar-

sales aparentemente simples, con un diente ba-

sal difícil de apreciar; surco en cara interna de

las coxas posteriores de las hembras, ubicado

medialmente (cuando está presente). Un

carácter relativo, aplicable a las especies cono-

cidas hasta este momento en Chile, es que en

vista lateral la zona dorsal y frontal del mesos-

cutum no forman un ángulo, sino que dicha

unión es más bien redondeada.

AULACUS KRAHMERI n. sp.

(Figs. 3, 6, 10 y 14)

Pristaulacus sp. 2: Barriga, 1990: 58.

Diagnosis: Coloración general negra; antenas

negras con algunos flagelómeros (y frecuente-

mente parte de otros), en su mital apical, de

coloración amarillenta; cabeza en vista lateral,

con la zona de transición vértex-frente con-

vexa; área de transición vértex-gena con una

mancha difusa, ovalada, de coloración rojo-os-

cura; mesoscutum con carenas transversales;

alas hialinas, las anteriores con celda costal y

zona basal débilmente ahumada y con el

pterostigma negro; segundo y tercer segmen-

tos de los tarsos posteriores siempre amari-

llentos.

Descripción: Hembra. Cabeza uniforme-

mente puntuada (20X), la puntuación es fina,

densa, superficial, quedando libre de ella sólo

una pequeña superficie triangular en el área

malar; dorso de la cabeza con textura fina de

tipo imbricada (40X); surco subantenal rudi-

mentario, evidenciado sólo por una depresión

irregular, con puntuación similar al resto de la

cabeza; pilosidad corta, de coloración clara, en

regular densidad y uniformemente distribuida,

aunque un poco más larga y con una mayor

concentración en el área malar y zonas antero-

laterales de la frente; occipucio lateralmente

con estriaciones débilmente concéntricas,

carena occipital ausente. Coloración general

negra, con una pequeña mancha difusa, de tipo

ovalada, de coloración pardo-rojiza, ubicada

detrás del borde posterior de los ojos. Frente

con una protuberancia central muy poco

alzada; ocelos separados entre sí, por una dis-

tancia menor que la mitad de la separación en-

tre los posteriores y el borde interno de los

Ojos.

Antenas negras, con los flagelómeros 5 y 6

y zona basal del 7 de coloración amarillenta,

en algunos ejemplares puede observarse tam-

bién que el ápice del 4 muestra dicha co-

loración; escapo corto y grueso, redondeado

ventralmente y de grosor casi el doble que el

pedicelo, que es casi la mitad del largo del es-

capo, primer flagelómero tan largo como el es-

capo y pedicelo juntos, el segundo más de dos

Elgueta y Lanfranco: La familia Aulacidae en Chile 91

veces el largo del primero, tercero similar al

segundo, y los restantes disminuyendo en

longitud y de un grosor más o menos uni-

forme.

Cabeza en vista lateral con dorso convexo

(Fig. 3); en vista dorsal, ancho máximo de la

cabeza, posterior a ojos, mayor que el ancho

máximo del tórax.

Mesoscutum con margen anterior redon-

deado, con carenas transversales evidentes so-.

bre los notaulis y proyectadas hacia las

parapsis; línea media ausente, líneas admedia-

nas visibles sólo en el quinto anterior,

paralelas. En vista lateral mesoscutum con

caída brusca pero convexa (Fig. 3). Mesoes-

cutelo también con carenas transversales y con

el área mediana posterior de aspecto subrec-

tangular, de bordes laterales cóncavos. -

Propodeo con escultura de tipo areolado-ru-

gosa; distancia del margen anterior a la inser-

ción del gaster, similar al ancho del orificio de

inserción.

Bordes laterales del tórax con escultura

variando del tipo foveolada a areolada-rugosa,

con carenas en las depresiones y zonas de con-

tacto entre piezas. Ancho máximo del tórax

menor que la mitad de su longitud (Tabla 1).

Coxas con puntuación fina y superficial,

observándose suaves estriaciones transver-

sales, más o menos regularmente distribuidas.

Cara interna de las coxas posteriores con

suaves estriaciones que confluyen hacia el

punto ventral medio; surco ubicado en la zona

media, casi perpendicular al eje longitudinal

de la coxa, visible en aproximadamente la mi-

tad del ancho de ella y con su borde anterior

más notorio (Fig. 6).

Fémures negros, con puntuación fina y

densa y con pilosidad negra muy corta, tibias

con pilosidad testácea y más densa; tibias me-

dias sin diente en su ápice externo; tibias pos-

teriores engrosando gradualmente desde su

base; primer tarsito más largo que los siguien-

tes en conjunto, uñas con un diente basal

pequeño en su cara inferior. Patas posteriores

con tarsitos 2 y 3 amarillentos, frecuentemente

con el 4 y el ápice del 1, de coloración parda a

pardo-amarillenta.

Gáster negro, en vista lateral de mayor

longitud que el tórax (Tabla 1); primeros dos

tergitos con zona de fusión evidente, aunque

poco notoria, en el costado superior (14X).

Alas hialinas, las anteriores con celda costal

y área basal ahumadas, con tres celdas sub-

marginales cerradas, segunda vena radio-me-

dial transversa insinuada en su cuarto

posterior, tercera vena radio-medial transversa

insinuada en la mayor parte de su longitud, a

partir del cuarto anterior; longitud de la

primera vena medio-cubital transversa menor

que el trazo de Rs+M entre el ángulo ántero-

apical de la primera celda discoidal y el án-

gulo póstero-basal de la segunda celda

submarginal (Fig. 10); alas posteriores con

dos hamulis. Longitud del ala anterior, menor

que la del ovipositor (Tabla 1).

Ovipositor pardo-rojizo con carenas en su

entorno apical observables a 60X (Fig. 14);

valvas negras con una zona amarillenta antes

de su ápice. Ovipositor mucho más largo que

el cuerpo, cerca de 2,5 veces la longitud del

gáster (Tabla 1).

Longitud total: 11,3 - 13,6 mm.

Macho: Similar a la hembra, de aspecto más

delgado; flagelómeros 8 a 10 de color amari-

llento y frecuentemente con el ápice del 7, a

veces totalmente, y parte basal del 11 también

amarillentos; patas posteriores con tarsitos 2-4

siempre amarillos, con el ápice (o mayor su-

perficie) del 1? de esa misma coloración.

Longitud: 10,2 - 13,5 mm.

Biología: Desconocida.

Hospederos: Ejemplares de esta especie han

sido obtenidos a partir de crianzas de los Cer-

ambycidae (Coleoptera) Calydon submetalli-

cum (Blanchard) y C. havrylenkoi Bosq

(Barriga, 1990). Otros ejemplares se han ob-

tenido en Valdivia, de crianzas de Callisphyris

spp. (E. Krahmer, comunicación personal), lo

cual permite suponerle un rango mas amplio

de hospederos dentro de Cerambycidae.

Distribución geográfica: VII Región (precor-

dillera) a X Región (Valdivia); dado que uno

de los hospederos de esta especie, C. submet-

allicum, tiene una amplia distribución en Chile

(V a XII Regiones), es dable esperar un patrón

92 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

distribucional mas amplio para este parasi-

toide.

Material tipo: Holotipo hembra Prov. Valdi-

via, Sto. Domingo, 11-XII-1983, E. Krahmer

leg. (MNHN). Paratipos: 2 machos y 1 hem-

bra de VII Región: Talca, Alto de Vilches,

emergidos en IX-1988, J.E.Barriga leg., ex

Calydon havrylenkoi; 1 macho y 1 hembra de

VIII Región: Ñuble, San Carlos, 14-11-1985,

S.Roitman leg.(obtenidos de crianzas de C.

submetallicum, M. Cerda, comunicación per-

sonal), 1 hembra de Puente Marchant, 6-I-

1988, S. Roitman leg.; 3 hembras de X

Región: Valdivia (Sto. Domingo) del 11-XII-

1983, 2-1-1990 y 19-X-1991, todas E.

Krahmer leg. (IEUM, MC, MNHN, UACH).

Otro material examinado: VIII Región:

Ñuble, 1 hembra de San Carlos 14-11-1985, S.

Roitman leg; X Región: Valdivia, 1 hembra de

Sto. Domingo, 8-XII-1983, E. Krahmer leg., 1

hembra con los mismos datos pero del 26-X-

1990; sin localidad, 1 macho (MNHN).

Etimología: el nombre específico está dedi-

cado a Ernesto Krahmer G.; deseamos de esta

forma rendir un homenaje póstumo a nuestro

gran amigo, quien fuera un desinteresado co-

laborador de numerosos investigadores.

AULACUS BRACONIFORMIS (Kieffer)

(Figs. 4,7, 11 y 14)

Neuraulacinus braconiformis Kieffer, 1911:

217-218; Kieffer, 1912: 359-360; Hedicke,

19059205

Aulacus braconiformis:

Carlson, 1979: 1114.

Pristaulacus sp.1: Barriga, 1990: 57, 58, 59.

Townes, 1950: 113;

Diagnósis: Coloración general negra; antenas

mayoritariamente anaranjadas, flagelómero 2

con una pequeña zona ovalada en posición ín-

fero-basal, y a partir del 9 en las hembras y

del 6 en los machos, negros, aunque son com-

pletamente negros sólo del 9 al 11, escapo y

pedicelo siempre negros; cabeza en vista late-

ral, con la zona de transición vértex-frente

muy aplanada; frente proyectada anterior-

mente, formando una carena transversal; al-

gunos ejemplares con el área de transición

vértex-gena con mancha ovoidal de color

amarillenta a parda; mesoscutum con algunas

carenas muy débiles en su parte media poste-

rior y también en los notaulis; alas ahumadas,

las anteriores con pterostigma y un área inme-

diatamente posterior a él de color anaranjado;

tarsos posteriores negros.

Redescripción: Hembra. Cabeza negra, fina

y superficialmente puntuada (40X), zona me-

dial del área malar y genas en su porción

súpero-medial con puntuación más fina y dis-

tanciada (50X); la puntuación es más concen-

trada y profunda en clípeo y parte

antero-apical del área malar; surco subantenal

rudimentario evidenciado sólo por una de-

presión irregular, con puntuación similar a la

de la frente; pilosidad corta, más densa en

genas, área malar, clípeo y zona frontal, de

color pardo oscuro a negra; carena occipital

ausente. Frente proyectada anteriormente, en

forma de carena transversal; ocelos separados |

entre si por una distancia menor que la mitad

de la separación entre los posteriores y el |

borde interno de los ojos.

Antenas con escapo y pedícelo negros, seg- |

mentos 1 al 8 del flagelo de color anaranjado,

el 9 mayoritariamente anaranjado con ápice

negro, base del 2 con una pequeña área oval

de color negro; escapo corto, subrectangular,

de grosor mayor que el resto de los antenitos,

pedicelo menos de la mitad del largo del es-

capo, primer flagelómero casi igual en longi-

tud que el escapo y pedicelo juntos, segundo

el doble de largo que el primero, tercero a

quinto similares al segundo; 1 al 7 aumen-

tando levemente en grosor, débilmente con-

vexos en su cara inferior.

Cabeza en vista lateral con dorso aplanado,

distancia vértex-frente más de dos veces la

distancia frente-clípeo (Fig. 4); ancho máximo

de la cabeza en vista dorsal, posterior a ojos,

mayor que el ancho máximo del tórax.

Mesoscutum con margen anterior redon- |

deado, con carenas sólo en notaulis y zona

póstero-medial; línea media invisible, líneas

admedianas realzadas, evidentes sólo en el ter-

cio anterior y convergiendo hacia atrás.

vista lateral, mesoscutum, anteriormente, con

caída convexa suave (Fig. 4). Mesoescutelo

En |

Elgueta y Lanfranco: La familia Aulacidae en Chile 93

sin carenas, y con el área mediana posterior

bien definida, rectangular. Propodeo con pun-

tuación de tipo areolado-rugosa; distancia del

margen anterior a inserción del gáster, mayor

que el ancho del orificio de inserción.

Bordes laterales del tórax con puntuación

variando del tipo puntuada a areolado-rugosa,

con carenas en depresiones y áreas de contacto

entre piezas. Ancho máximo del tórax menor

que la mitad de su longitud (Tabla 1).

Coxas con puntuación fina, débilmente

estriadas en su base. Cara interna de los coxas

posteriores con surco ubicado medialmente,

oblicuo, de un ancho más o menos uniforme y

con ambos bordes claramente distinguibles, de

una longitud aproximada a los 2/3 del ancho

máximo de la coxa (Fig. 7). Patas negras;

fémures y tibias con puntuación fina y pilosi-

dad corta de coloración negra; tibias medias

sin diente en su ápice externo; tibias posterio-

res engrosando paulatinamente desde su base:

primer tarsito más largo que los siguientes en

conjunto; uñas con un pequeño diente basal en

su cara inferior.

Gáster negro, en vista lateral de mayor

longitud que el tórax (Tabla 1); primeros dos

tergitos con fusión evidenciada en las áreas

súpero-laterales (14X).

Alas ahumadas; las anteriores con

pterostigma, ápice de la primera celda submar-

ginal y base de la marginal de color anaran-

jado; con tres celdas submarginales cerradas,

segunda vena radio-medial transversa in-

sinuada en la mayor parte de su longitud a par-

tir del cuarto anterior; longitud de la primera

vena medio-cubital transversa menos que el

trozo de Rs+M entre ángulo antero-apical de

la primera celda discoidal y ángulo postero-

basal de la segunda celda submarginal (Fig.

11); alas posteriores con 3 hamulis. Longitud

del ala anterior sólo un poco menor que la

longitud del ovipositor (Tabla 1).

Ovipositor pardodo-rojizo oscuro, con care-

nas en su contorno apical, algo más expre-

sadas que en la especie anterior (Fig. 15);

valvas negras. Ovipositor más corto que el

cuerpo, cerca de 1,5 veces la longitud del

gáster (Tabla 1).

Longitud total: 15,55 - 16,3 mm.

Macho: Similar a la hembra, con los segmen-

tos 9 al 11 del flagelo siempre negros, en

muchos ejemplares se observa incremento de

la superficie con coloración negra desde el

ápice del flagelómero 6. Cabeza negra con

zona lateral del vértex con mancha ovoidal de

color amarillenta a pardo oscuro. Longitud:

15,7 - 17,4 mm.

Biología: los únicos antecedentes conocidos

corresponden a las observaciones de Barriga

(1990).

Hospederos: Se han obtenido ejemplares de

esta especie a partir de crianzas del ceram-

bicido Hephaestion lariosi Cerda (Barriga, op.

cu)

Distribución geográfica: Conocido hasta el

momento sólo de la Región Metropolitana.

Material examinado: Región Metropolitana:

Timachos iy hembra de Colina El

Portezuelo, 10-XI-1988, en flores de Maytenus

boaria;, 1 hembra de El Arrayán, XII-1966, T.

Ramírez coll.; 1 macho de El Manzano, emer-

gido el 5-XII-1989, J.E.Barriga coll., ex

Hephaestion lariost; 1 macho y una hembra de

San José de Maipo, emergidos el 1-X-1989,

J.E. Barriga coll., ex H. lariosi; 2 machos de

San Alfonso, emergidos el 1-XI-1989, J.E.

Barriga coll., ex H. lariosi; 1 macho y 2 ninfas

de San Alfonso, 5-XII-1989, J.E. Barriga coll.,

ex H. lariosi ((EUM, MNHN, UACH).

Holotipo hembra de Chile sin localidad pre-

cisa, no examinado, depositado (Kieffer,

1911) en el British Museum (Natural History).

AGRADECIMIENTOS

Por su ayuda en la recopilación de litera-

tura, expresamos nuestro reconocimiento al

Dr. Daniel Burckhardt (Muséum d'Histoire

Naturelle, Ginebra-Suiza), Sr. Thomas Fichet

(Facultad de Ciencias Agrarias y Forestales,

Universidad de Chile, Santiago), Sr. Eric Ji-

roux (París-Francia), Dr. Juan J. Morrone

(Museo de La Plata, Argentina) y Sr. Sergio

Riese (Génova, Italia). Asimismo agrade-

cemos el préstamo de material tipo, efectuado

por el Dr. Frank Koch (Museum fir

94 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Naturkunde der Humboldt-Universitát, Berlín

- Alemania), la información proporcionada por

el Dr. E. Richard Hoebeke (Department of En-

tomology, Cornell University, U.S.A.) y en es-

pecial, los antecedentes aportados por el Sr.

Juan HE. Barriga (Facultad de Ciencias

Agrarias y Forestales, Universidad de Chile,

Santiago) y Dr. Miguel Cerda G. (Santiago),

además de las facilidades otorgadas por los

propietarios o responsables de las colecciones

examinadas, detalladas en Material y Método.

A María E. Muñoz por su ayuda en las distin-

tas transcripciones de los originales.

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VARIABLES MORFOMETRICAS (MM) DE LAS ESPECIES DE AULACIDAE PRESENTES EN CHILE

P. rubriventer

hembra

E. capitalis

hembra

A. krahmeri

hembras

rl

machos

>

A. braconiformis

hembras

15,5

machos

X

d.s.

LT

14,1

9,8

11,6

11,3

12,4

13,6

12,2

12,8

13,5

12,3

13,1

12,5

0,8

11222

13,5

10,2

125

12

1,4

16,3

16,4

16,9

17,0

15,7

177

17,0

16,9

17,4

16,8

0,5

Elgueta y Lanfranco: La familia Aulacidae en Chile

AT

3,3

ZA

2,0

189,

ZZ

DL

Zi

ZEZ

258

2,0

2D

2!

0,1

17

2,0

1,6

189,

1,8

0,2

2,4

2,3

22

2,6

iS

Dz,

ZE

Dl

ZAS

2,6

2,4

0,2

TABLA 1

LTO

6,4

4,6

4,8

4,7

TS

5,3

4,9

5,4

SS

4,7

SES

5,1

0,3

3,8

4,3

Sy ll

4,3

3,9

0,6

6,5

NS

5,4

0)

79

4,9

DD

doll

5,6

dol

SS

0,3

LG

6,4

4,4

6,5

6,3

6,8

US

6,4

6,3

7,4

6,1

6,6

6,7

0,5

6,9

7,8

6,7

7,4

1/2

0,5

8,4

8,6

9,9

10,3

10,2

9,4

10,4

11,0

10,5

10,3

0,5

LA

11,4

8,2

9,6

9,1

95)

10,5

9,8

10,5

10,7

10,2

10,3

10,0

0,5

8,8

9,4

qe2

8,2

8,4

0,9

12D

JLS)

11,4

12,4

11,3

10,7

12,0

11,9

JLS)

12,0

11,7

0,5

LO

9,8

S,6

157,

158

16,2

17,1

15,6

16,8

17,8

Wo

16,6

16,8

95

LT= longitud total, medida dorsalmente desde frente a ápice del gáster; AT= ancho máximo del tórax, dorsalmente, anterior

a tégulas; LTO= longitud del tórax, medida lateralmente desde ápice de propleuras hasta inserción de coxas posteriores;

LG= longitud del gáster, medida lateralmente; LA= longitud del ala anterior; LO= longitud aproximada del ovipositor,

medida desde el extremo del abdomen.

X = promedio, d.s.= desviación estandar

96 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

NN sos

allb

Figuras 1-4: Esquemas, en vista lateral, de cabeza y parte del tórax. 1. Pristaulacus rubriventer (Philippi), 2. P. capitalis

(Schletterer), 3. Aulacus krahmeri n. sp., 4. A. braconiformis (Kieffer). La escala representa 1 mm en cada caso.

Ml

Figuras 5-7: Esquema de la cara interna de la coxa posterior. 5. Pristaulacus rubriventer (Philippi), 6. Aulacus krahmer! n.

sp., 7. A. braconiformis (Kieffer). La escala representa 0,5 mm en cada caso.

6

Elgueta y Lanfranco: La familia Aulacidae en Chile

Figuras 8-11: Esquema del ala anterior. 8. Pristaulacus rubriventer (Philippi), 9. P. capitalis (Schletterer), 10. Aulacus

krahmeri n. sp., 11. A. braconiformis (Kieffer). La escala representa 2 mm en cada caso.

A e...

¿a .

mm”

13

Figuras 12-15 : Esquema del ápice del ovipositor, en vista dorsal (arriba) y lateral (abajo). 12 Pristaulacus rubriventer

(Philippi), 13. P. capitalis (Schletterer), 14. Aulacus krahmeri n. sp., 15. A. braconiformis (Kieffer). La escala representa

0,3 mm en cada caso.

91)

AAA qn

EN AA darlo); bo

Y ALTER

,

rar 4

A TA Y

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 99-115

COMPORTAMIENTO REPRODUCTIVO DE CENTRIS MIXTA TAMARUGALIS

(HYMENOPTERA: ANTHOPHORIDAE).

II PARTE: NIDIFICACION Y ESTADOS INMADUROS '

ELIZABETH CHIAPPA? Y HAROLDO Toro?

RESUMEN

En el presente trabajo se describen los hábitos de nidificación y los estados inmaduros de Centris

mixta tamarugalis, comparándola con otras especies del género. Vive en sitios permanentes de

nidificación asociada con algarrobos y tamarugos (Prosopis spp.) en el área norte de Chile.

ABSTRACT

The nesting habits of Centris mixta tamarugalis, that breeds associated with Prosopis spp in

permanent sites in the desert area of northern Chile, are described and compared with other species

of Centris. Descriptions of immature states of development are also included.

INTRODUCCION

El estudio del comportamiento reproductivo

de Centris mixta tamarugalis Toro et al.

(1991), presenta un gran interés biológico de-

bido a las estrategias altamente adaptativas

que deben mostrar las especies que se de-

sarrollan en un ecosistema desértico, con con-

diciones ambientales de selectividad extrema,

como ocurre en la Pampa del Tamarugal, ubi-

cada en la 1? Región de Chile (entre los

paralelos 19% y 21? S).

Varios estudios sobre la biología y compor-

tamiento de las abejas del género Centris se

Trabajo financiado por Proyecto Fondecyt 0644-88 y

Dirección General de Investigaciones de la U. Católica de

Sa

Facultad de Ciencias Naturales y Exactas, Universi-

dad de Playa Ancha, Casilla 34-V, Valparaíso-Chile. Fax

56-32-285041.

Departamento de Zoología, U. Católica de Valparaíso,

Casilla 4059, Valparaíso-Chile. Fax 56-32-212746.

(Recibido: 9 de marzo de 1994. Aceptado: 14 de julio

de 1994)

han realizado en los últimos años, desde que

Michener é: Lange aportaran sus observacio-

nes en 1958. Así Alcock et al. (1976) presen-

tan información sobre la nidificación de C.

rodophus Cockerell, C. cockerelli resoluta

Cockerell y C. pallida Fox. Sobre este mismo

aspecto y la actividad parasitaria, en C. flavo-

fasciata Friese han escrito Vinson ef

al..(1987). Por su parte, Chemsak (1985) ha

realizado algunas observaciones sobre la con-

ducta de los adultos de esa misma especie.

Los nidos de C. aethyctera Snelling y de C.

segregata Crawford han sido descritos, res-

pectivamente, por Vinson éz Frankie (1977) y

Coville et al. (1983) quienes, además, presen-

taron una interesante discusión de los hábitos

de nidificación de las especies de Centris,

planteando que las mayores diferencias

estarían asociadas a nivel de los distintos sub-

géneros. Información sobre la nidificación de

C. heithausi Snelling y la conducta territorial

de los machos de la especie, relacionada con

las secreciones de las glándulas de las patas

posteriores, fue presentada por Coville et al,

(1986). Sobre la variación del tamaño y el

éxito reproductivo de machos y hembras así

como de estrategias alternativas en la repro-

100 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

ducción ha trabajado activamente Alcock

(1976, 1979 y 1989) sobre C. pallida Fox. En

relación a territorialidad de machos, los traba-

jos de Frankie et al., (1980) en C. adani Cock-

erell y de Williams et al. (1984) en C. nitida

Smith y C. trigonoides subtarsata Cockerell,

han constituído un aporte importante en el

conocimiento de las especies del bosque seco

de Costa Rica.

Recientemente, Rozen £ Bushmann (1990),

han realizado una descripción y comparación

de la nidificación y estados inmaduros de C.

caesalpineae Cockerell y C. pallida Fox re-

lacionándolas, además, con información bi-

bliográfica de otros Centridini.

De las once especies chilenas del género

(Toro, 1986) sólo ha sido estudiada la biología

de C. cineraria Smith, C. nigerrima Spinola

(Janvier, 1926), especies solitarias de la zona

central de Chile, y se ha descrito la conducta

de los machos de C. mixta tamarugalis (Toro

et al., 1991), que vive en agregaciones en el

norte del país.

Algunos aspectos biológicos de C. autrani

Vachal, especie que se encuentra en el norte

de nuestro país, han sido descritos por Janvier

(1955) para poblaciones de Cochabamba, Bo-

livia y del sur del Perú, en los alrededores del

Cuzco.

Por razones de dificultad en encontrar ejem-

plares, el estudio de los estados inmaduros de

las abejas es mucho menos frecuente que el de

los adultos (McGinley, 1989). En efecto,

Rozen (1965) y Rozen € Buchmann (1990)

han sido los únicos que han realizado estudios

más completos sobre los juveniles de la tribu

Centridini. Por ésto, en el presente trabajo,

continuando con lo reportado sobre el compor-

tamiento reproductivo de Centris mixta

tamarugalis (Toro et al., 1991), se describen

los hábitos de nidificación y la morfología de

los estados juveniles, en el desierto del Norte

de Chile, comparándolos con otras especies de

Centris.

El desierto del norte de Chile corresponde a

una planicie ubicada entre la Cordillera de la

Costa y la Cordillera de Los Andes; es uno de

los más áridos del mundo, con escasa pluviosi-

dad y amplias oscilaciones térmicas durante el

día. A pesar de estas condiciones, entre los

paralelos 19% y 21” lat S, existen bosque natu-

rales y plantaciones de varias especies del

género Prosopis, entre las que P. tamarugo es

la más abundante. Estos árboles adaptados a

vivir en condiciones extremas, incluyendo los

salares que allí existen, se desarrollan en la

llamada Pampa del Tamarugal, que en su to-

talidad tiene una superficie aproximada de

12.000 Km”. En relación a estos bosques he-

mos encontrado un gran número de áreas de

nidificación de C. mixta ubicadas en zonas

abiertas y sin vegetación pero cercanas a los

árboles de Prosopis spp.

MATERIALES Y METODO

Las observaciones se llevaron a cabo en la

Pampa del Tamarugal, I Región, 13 Km al sur

del pueblo de La Tirana, a 900m sobre el nivel

del mar, en un área de nidificación de aproxi-

madamente 3000 m” de superficie, ubicada en

el Salar de Pintados. El mapa y mayores

detalles sobre su situación se pueden obtener

en Toro et al., (1991). Además se realizaron

experiencias en Quillagua, II Región (21? 39”

lat S - 69% 33” long W), que se tomaron como

elementos comparativos. Se visitó la zona en

los meses de Agosto, Octubre y Febrero para

hacer las excavaciones de los nidos y cuantifi-

caciones de las celdillas y estados juveniles.

Se excavaron 15 nidos para observar su estruc-

tura general, además se tomaron 30 muestras

de suelo, de 25 x 23 cm, con todas las celdillas

que allí se encontraban, las que posteriormente

fueron revisadas en el laboratorio. Las

celdillas fueron trasladadas cerradas, por lo

que las larvas hibernantes que contenían, pu-

dieron ser observadas vivas. En tales condi-

ciones han permanecido, sin mayores

alteraciones, por más de dos años, sin alcanzar

el estado adulto. Estas larvas fueron colec-

tadas en el mes de febrero, en el tiempo en que

la floración de Prosopis spp., de las que se ali-

mentan los adultos, había pasado y ya no

quedaban ejemplares sobrevolando el lugar.

Los huevos y larvas de los primeros instars

se recolectaron durante los primeros días del

mes de octubre, cuando las hembras estaban

en periodo de construir celdillas y se conser-

varon en alcohol al 70%.

Para observar estructuras por transparencia,

una gran serie de larvas se hirvieron en KOH

Chiappa y Toro: Nidificación y estados inmaduros de Centris mixta tamarugalis 101

al 5%, durante 5-6 min y luego fueron exami-

nadas, en glicerina, con microscopio estereos-

cópico Wild.

Las celdillas, los juveniles y los opérculos

se midieron con pié de metro.

Se tomaron fotografías en microscopio elec-

trónico JEOL ISM-25-SII, de la cabeza de la

larva postdefecante, del 1”-4” instar, del opér-

culo y de la pared del capullo.

Se realizaron experiencias en relación a la

permeabilidad de la celdilla y del capullo que

teje la larva, sumergiendo 10 de ellas en una

cápsula de Petri que contenía agua y obser-

vando los cambios que ocurrían durante 7

días:

- en celdillas sumergidas completamente

- sumergidas parcialmente.

Se remojaron 10 masas fecales durante 24

hs a fin de reconstituir su condición original.

Se hizo un análisis de suelo del área de la

Pampa del Tamarugal, con la tierra que se en-

contraba a la altura de las celdillas.

Para realizar las descripciones se siguió

como pauta el trabajo de Rozen €£ Buchmann

(1990) a fin de facilitar futuras comparaciones

y, también, la lista de caracteres para describir

las pupas de abejas de Michener (1954) y Tor-

chio 4% Burwell (1987). El número de ejem-

plares observados fue de 3 hembras y 3

machos, en el caso de las pupas, y una larga

serie de larvas.

Los ejemplares descritos se conservan en la

colección de uno de los autores (E. CH.). Esta

subespecie será denominada C. mixta en el

presente trabajo.

RESULTADOS Y DISCUSION.

Area de nidificación.

El área de nidificación de La Tirana, en la

Pampa del Tamarugal, es de grandes dimen-

siones y de superficie plana. En Quillagua, en

cambio, los nidos están ubicados en una ladera

de aproximadamente 15% de inclinación, con

exposición este. No se han encontrado nidos

construidos en paredes verticales.

El terreno se presenta levemente com-

pactado, pero no duro, de muy baja humedad;

técnicamente presenta una textura franco ar-

cillo-arenosa. El análisis de suelo entregó los

siguientes resultados: arena 49.2%, arcilla

34.1% y limo 16.7%, alta conductividad eléc-

trica y pH de 8.55. Esta capa de 5 a 20 cm de

profundidad descansa sobre una de sal muy

dura que aflora, de manera irregular, en la su-

perficie de algunos lugares.

C. mixta es una especie gregaria y cons-

truye nidos en el suelo, reutilizando las mis-

mas áreas de nidificación, año tras año. Se

observa gran densidad de nidos, siendo la

mayor cantidad encontrada de 256 entradas

por m”, que corresponde a un lugar cercano a

los tamarugos. No se observa un patrón en la

distribución o agrupación de los nidos, ya que

hay zonas de baja densidad (1-20 nidos/m?)

vecinas a áreas de alta densidad (256 ni-

dos/m?) y, los límites de las zonas de nidifica-

ción no se encuentran bien definidos (Fig.1).

Figura 1: Entrada a los nidos en una zona de alta densidad

en el área de nidificación de Centris mixta. Se puede notar

los montículos de la tierra excavada por las hembras.

Se han observado varias estrategias, en la

tribu Centridini, en relación a la reutilización

del sitio de nidificación (Roubik € Michener,

1980; Rozen 4 Buchmann, 1990). De la

misma manera que C. ruffosuffusa Cockerell

(Callan, 1977), C. mixta construye sus nidos

en agregados, todo el tiempo en el mismo

lugar. Las razones para tal comportamiento

pueden ser: la limitada disponibilidad de fuen-

tes de alimentación, las características del

terreno que corresponde a un salar con pocos

lugares sin afloramientos de sal y a la gran

cantidad de parásitos en el área.

Según Coville et al., (1983), la construc-

ción de nidos en el suelo, ubicados en superfi-

cies horizontales o suavemente inclinadas, tal

102 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

como lo observado en C. mixta (subgénero

Paracentris), corresponde a la condición más

primitiva en la tribu Centridini. Sin embargo,

el hecho de que C. mixta construya el nido con

un grupo de celdillas al término de un túnel

principal, rellenado con material del suelo por

la hembra, sería una condición derivada, que

escapa a la que presentan otras especies del

subgénero Paracentris, siendo más semejante

a Centris (Trachina) heithausi. El número

elevado de celdillas es posible debido a que el

estrato en que están situadas es fácil de ex-

cavar, pero es limitada por el estrato inferior

notoriamente más duro y de características

salinas que podría impedir la permanencia de

los juveniles, aunque estén protegidos por las

paredes de las celdillas. La presencia de

pequeños túneles laterales o celdas sin cerrar

al inicio el nido, como ocurre en esta abeja,

además de evadir parásitos (Vinson éz Frankie,

1977), sirve para alojar a los adultos que los

usan como dormitorio. Esto establece una di-

ferencia con otras especies gregarias que

pasan la noche en lugares cercanos a la zona

de nidificación.

Descripción de los nidos.

Los nidos están constituidos por un túnel obli-

cuo, de aproximadamente 45% de inclinación,

con un solo orificio de entrada y un pequeño

montículo lateral (0,3-0,8cm; n= 5) formado

con la arena producto de la excavación

(Fig.1). La entrada es circular (0,9-1,3cm;

n=6) y nunca se encuentra protegida por algún

elemento del medio como ramas, piedras u

otros. Este orificio permanece abierto durante

el abastecimiento de las celdillas y es cerrado

por las hembras cuando termina ese proceso.

En las zonas de gran densidad hay algunos ni-

dos que pueden estar conectados internamente.

El largo del túnel depende de las condiciones

del terreno y de la altura de la capa de sal,

puesto que en Quillagua, donde es más

deleznable, la profundidad del túnel no sobre-

pasa los Scam (233175 n=.13; 1= 4=8cm) En

cambio en La Tirana, permite excavaciones de

mayor profundidad (x= 10,8; n= 13; r= 7-17

cm).

Características de las celdillas.

tumulus

Figura 2: Esquema del probable patrón del nido de Centris |

mixta.

En los nidos más típicos (Fig. 2) suele haber

1-2 celdillas en el recorrido del túnel, excep-

cionalmente, se puede encontrar (a 2-3cm

desde la entrada) una excavación lateral que, |

al igual que el túnel, puede ser ocupada por |

los adultos para dormir. En su término, se en-

cuentra un número variable de celdillas, gene- |

ralmente 4-8, sin embargo, en áreas densas, es

imposible determinar el número que pertenece

a cada uno de los nidos, ya que hay una capa

continua de celdillas, de la temporada y otras

más antiguas que se conservan perfectamente |

debido a la baja humedad del suelo. En ver- |

en estas zonas es tal la cantidad de |

dad,

celdillas, que prácticamente se podría definir

un estrato formado solamente por ellas

(Eig43):

En esta situación de alta densidad de nidos, |

las primeras celdillas están en posición verti- |

Chiappa y Toro: Nidificación y estados inmaduros de Centris mixta tamarugalis 103

Figura 3: Celdillas fotografiadas in situ, la gran cantidad

forma un verdadero sustrato por encima de la capa dura de

sal.

cal y las más inferiores, en posición casi hori-

zontal, debido a que están tocando la capa de

sal. Más excepcionalmente hemos encontrado

celdillas colocadas unas sobre otras.

TABLA 1

CONTENIDO DE CELDILLAS DE UNA MUESTRA

DE SUELO DE 25x25cm.

Celdillas con tapa: N?

- con larvas vivas 19

- con larvas muertas 2

- parasitadas por Mutillidae 11

- parasitadas por Bombyliidae 1

Celdillas sin tapa:

- antigua 49

- en contrucción 5

En la Tabla 1 se indica lo encontrado en

una muestra de suelo de 25x25cm en cuya su-

perficie habían 15 orificios de entrada a los ni-

dos. Allí se puede observar un alto grado de

parasitismo, ya que de un total de 76 celdillas

encontradas en la muestra, un 16% estaban

parasitadas, lo que es bastante más que la can-

tidad de parásitos en una población de C. cae-

salpineae (Rozen 8: Buchmann, 1990).

Hay características generales, como la poca

profundidad a que se encuentran las celdas y

la forma de barril, que son comunes a todas

las especies de Centris descritas hasta ahora.

La construcción de una celdilla, su si-

tuación hipógea y la acumulación de reservas

de la larva contribuyen a favorecer un estado

diapáusico en espera de los recursos ofrecidos

por Prosopis. La necesidad de incorporar

rápidamente la mezcla de néctar y polen acu-

muladas por la madre, que fermenta fácil-

mente, hace poco posible una dormancia en

estado de huevo o larva no completamente de-

sarrollada. Parece también probable que, las

formas de pupa y adulto, tampoco sean venta-

josas por razones energéticas, por un lado, la

relación superficie/volumen es mayor y, por

otro, la larva postdefecante es de gran tamaño

y puede acumular gran cantidad de material

graso, que es imposible de igualar en otro

estado de desarrollo.

Las celdillas son claramente diferenciables

del terreno y también fáciles de sacar. Tienen

forma cilíndrica, bastante simétrica, de base

Ú

Figura 4: Vista lateral de celdillas mostrando la variación

de tamaños y formas

redondeada y ápice truncado que lleva una

tapa casi plana. Miden de x= 1,81cm de largo

(n= 64; r= 1,6-2,08cm) y de ancho máximo X=

1.2cm (n= 64; r= 1,04-1,34cm) (Fig. 4). Están

construídas con granos del suelo, aglutinados

con material secretado por la hembra; las

celdillas de la temporada se observan con

mayor humedad que las antiguas las que,

además, son más claras y duras. El grosor de

las paredes es variable (X= 1,88mm; n= 7; r=

1,44-2,36mm), generalmente, algo más grue-

sas hacia la región del opérculo (Fig. 5).

En la constitución de la pared se pueden

apreciar dos capas, una externa, la más gruesa,

hecha con granos de mayor diámetro y poco

cohesionados y una interna más delgada y

conformada por material fino muy apretado.

Esta es más dura y pulida, ya que las partícu-

104 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figura 5: Vista lateral de celdillas. Se observa, a la

izquierda, el extremo del capullo y el opérculo, en donde

se ha retirado el extremo superior de las paredes y la tapa

y, a la derecha, dejando la tapa de la celdilla se puede ob-

servar que está totalmente adherida al opérculo.

las se encuentran unidas por una sustancia ce-

mentante y va recubierta, internamente, por un

material de tipo ceroso, suave y brillante, ex-

cepto en la tapa de la celda.

Al ser sumergidas en agua, estas dos capas

se disuelven, la más externa en forma casi in-

mediata; al cabo de 24 hr, ambas capas se

desintegran, quedando a la vista el capullo te-

jido por la larva y algo del material adherido a

la base, a la altura donde se depositan las fe-

cas. En esta zona, los granos son más difíciles

de separar debido, posiblemente, a la impreg-

nación de la pared por los productos de la di-

gestión de la larva. Estas características de las

celdas de C. mixta confirman lo que sugieren

Rozen 4% Buchmann (1990) en relación a la

desintegración y permeabilidad de las paredes

construidas por las abejas pertenecientes a la

tribu Centridini.

La tapa de la celdilla está confeccionada

con el mismo material del que conforman las

paredes de la celdilla, su grosor es de x= 2mm

(n = 7; r = 1,56-3,18mm). Está construída 1-

2mm bajo el borde superior de la celda, de

modo que queda un borde irregular sobresa-

liendo alrededor ello, agregado al efecto del

engrosamiento que se produce en la unión con

las paredes de la celdilla, le da un aspecto li-

geramente excavado.

La tapa de la. celdilla de C. mixta es dife-

rente a la de C. rhodophus y C. cockerelli (Al-

cock et al., 1976), C. aethyctera (Vinson é

Frankie, 1977), C. inermis (= segregata)

(Coville et al., 1983) y C. heithausi (Coville

et al.,1986), en las cuales hay algún tipo de

proceso o de modificación. La tapa es seme-

jante, aunque más aplanada aún, a la de C.

pallida (Alcock et al., 1976), por lo que sería

la más plana comparada con las de otras espe-

cies en que no se ha sido descrito ningún tipo

de proceso, (C. nigriventris Jorgensen, 1912;

C. lanipes Michener £ Lange, 1958; C. fur-

cata y C. autrani Janvier, 1955). A diferencia

de C. caesalpiniae, a veces, se puede observar

una disposición concéntrica o algo helicoidal

de los granos (Fig.6), pero no se presenta

ningún tipo de material recubriendo interna-

mente la tapa como ocurre en esta última espe-

cie (Rozen € Buchmann, 1990) y en C.

segregata (Coville et al., 1983). Como se

puede notar, la tapa de la celdilla es un cárac-

ter de gran importancia sistemática, pro-

bablemente a nivel específico, ya que no se

observan formas representativas para los sub-

géneros de la tribu.

Figura 6: Tapa de la celdilla: a) cara interna, que muestra

la posición helicoidal de los granos que la conforman y b)

cara externa, de superficie plana sin procesos de ningún

tipo.

La confección de un capullo, muy imper-

meable, está relacionado con la presencia de

palpos y antenas, el labio proyectado anterior-

mente y la forma amplia de la abertura del

salivarium, de acuerdo a lo planteado por

Rozen (1965). El capullo que teje la larva

tapiza por completo el interior de la celdilla,

incluyendo un opérculo circular (de acuerdo a

la nomenclatura de Rozen, 1984), ubicado

bajo la tapa y una base que aísla las fecas. Es

Chiappa y Toro: Nidificación y estados inmaduros de Centris mixta tamarugalis 105

de color amarillo, traslúcido y algo más opaco

a la altura de las heces. A ese nivel puede, a

veces observarse una zona lineal de

aproximadamente lmm de altura que, pro-

bablemente, constituye una zona de unión en-

tre la zona superior e inferior del capullo,

debido a una discontinuidad en la confección

del mismo y en relación a la deposición larval.

Esta línea sugiere, que el opérculo y las pare-

des son tejidos por la larva en un tiempo

distinto de aquél en que es confeccionada la

base que la aisla de las heces (Fig. 7). El

capullo no mantiene una forma determinada,

pero es muy impermeable y previene a la larva

de la deshidratación, ya que no se disuelve

cuando es mantenido en agua y la larva per-

manece perfectamente aislada y sin mayores

alteraciones, aunque se haya disgregado la

tierra que forma la celdilla. Ello se pudo com-

probar, además, cuando se mantuvieron algu-

nas de ellas sumergidas en agua durante 7 días

y no se encontró líquido en el interior. Los

capullos, por lo demás, han conservado las lar-

vas vivas y prácticamente sin problemas de

deshidratación, cuando han sido mantenidas

durante dos años a temperatura ambiental. A

pesar de ésto, no se ha logrado estado adulto

en condiciones de laboratorio.

En relación a la tapa aplanada, el opérculo

que la recubre internamente está muy adherido

a ella (por lo que algunos granos son difíciles

de desprender). El opérculo tiene poco de-

sarrollo en altura, puede ser ligeramente con-

vexo por la cara superior y presentar

Pd rita

IN

a

engrosamiento central (Fig. 9a), por mayor

concentración de fibras tejidas en esa zona

(Fig. 8). La parte central engrosada (X=

0,15mm; n= 6; r= 0,14-0,18mm), muestra en

corte transversal (Fig. 9a, b), una superficie

compacta en forma de una delgada lámina, en

donde se pueden observar fibras finas en re-

lieve (Fig. 10a). Bajo ella, una gran cantidad

de fibras paralelas a la superficie, en mayor

número hacia el centro. Inmediatamente al-

rededor hay fibras de grosor y forma vari-

ables que forman una malla con espacios

irregulares (Fig. 10b). Hacia la periferia el te-

jido se torna nuevamente compacto, tomando

la constitución y grosor que se observa en el

resto del capullo (x= 0,lmm; n= 6; 0,08-

0,12mm).

Estas características particulares, confirman

que el opérculo es, también, una estructura de

gran importancia para diferenciar especies

dentro del género (Rozen, com. personal),

como se puede observar al comparar lo que

ocurre en C. caesalpiniae, C. pallida y Ericro-

cis lata (Rozen € Buchmann, 1990).

A este respecto se puede pensar que C

mixta presenta un estado primitivo, en que el

opérculo no tiene otra función que aislar a la

larva de la deshidratación. Las especies que

tienen la característica de tener un opérculo

con mayor número de capas confeccionadas

con distintas sustancias, es un estado derivado

relacionado con una tapa más elaborada que

lleva, a veces, una abertura que comunica a la

larva con el medio, la que podría cumplir el

Figuras: 7-8: 7. Area del capullo que muestra una zona de unión a la altura donde termina la masa de fecas 8. Vista semila-

teral de la cara interna del opérculo.

106 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figuras 9 - 10: 9a. Corte transversal del opérculo con la disposición de las fibras del engrosamiento cetral. 9b. Centro del

opérculo con mayor aumento donde se ven las fibras dispuestas paralelamente a la superficie. 10a. Zona lateral del opérculo

compuesta de una malla de fibras irregulares en tamaño y disposición. 10b. Superficie de la zona central del opérculo que se

muestra como una capa fina, continua y con algunas fibras de diferentes grosores en relieve.

rol de difundir gases o paso de aire aislándola,

por medio del opérculo, de parásitos u otros

agentes externos.

La emergencia de los adultos se realiza

rompiendo el opérculo y la tapa, abriéndose

paso con patas y mandíbulas, pero en forma

distinta a C. caesalpiniae (Rozen 4 Buch-

mann, 1990) ya que la tapa no ha sido recu-

perada dentro o fuera de la celdilla, por lo que

al salir, las abejas deben morderla y

despedazarla.

Contenido de las celdillas.

El alimento depositado en la base de la

celdilla, es una masa de polen que tiene una

consistencia casi sólida, aunque varía su den-

sidad en las dos áreas observadas, siendo más

liquida y aromática en Quillagua. Puede lle-

gar a conformar hasta 1/3 del volumen de la

celdilla habiendo, además, polen adherido a

810

las paredes en forma de una capa fina que al-

canza, normalmente, hasta 2/3 de la altura to-

tal (Fig. 11). Sin embargo, hay que hacer

notar que estas cantidades son muy variables

en distintas celdillas observadas. Tanto las

diferencias de tamaño de la celdilla como de la

cantidad de alimentos sean, posiblemente, la

causa de los distintos tallas que se pueden

apreciar entre los adultos.

Las heces depositadas por la larva, en la

base de la celdilla, ocupan aproximadamente

1/6-1/5 del volumen, siguen la forma del ápice

redondeado y presentan una superficie supe-

rior muy cóncava y lisa. La masa fecal está en

contacto directo con la pared de la celdilla y

aislada de la larva por el capullo. Tienen un

peso variable de x = 0,5755 grs (n = 12; r =

0,3133-0,7899grs). Las fecas se deshidratan,

se endurecen y contribuyen a reforzar la base

de la celdilla. Contienen una gran cantidad de

Chiappa y Toro: Nidificación y estados inmaduros de Centris mixta tamarugalis 107

Figura 11: Celdilla abierta para mostrar la cantidad y dis-

posición de la masa de alimento.

restos vacíos de granos de polen y presentan

aspecto diferente de acuerdo al orden en que

fueron depositadas. Según se pudo observar,

en algunas de ellas que fueron remojadas en

agua, las primeras fecas ubicadas en el fondo

son amarillas y con consistencia de mucosa,

posteriormente toman forma de pequeñas

láminas, de extremos aguzados, compactadas

y de color blanco amarillento (Xx = 1,9mm; n =

8; r = 1,5-2,4mm); probablemente la forma

laminar se deba al aplastamiento que sufren

por el peso propio, el de la larva y por la colo-

cación del capullo sobre ellas. Finalmente, las

últimas heces depositadas, son de color café

oscuro y ubicadas hacia el centro de la masa

fecal. Sobre ellas, y algo adherida, se puede

encontrar la cubierta de la pupa, de color

blanco amarillento, aplastada y de largo X=

6mm (n =3; r = 5-7mm).

Descripción de los estados de desarrollo.

Según lo observado en la Pampa del Tamaru-

gal, el desarrollo de las larvas es muy rápido,

a principios de octubre se colectaron los

primeros huevos y celdillas en construcción y

en diciembre, las larvas ya estaban todas en

estado de diapausa, lo que está de acuerdo con

la floración principal de Prosopis spp., (al-

garrobos y tamarugos), que va desde septiem-

bre a fines de noviembre.

Huevo.

El huevo es de color blanco amarillento, mide

de largo 42 29m (16 7 M="2:5e3, 2111101):

Presenta forma cilíndrica, ligeramente encur-

vado y va colocado sobre la parte central, o

ligeramente lateral, de la masa de alimento

(Fig. 12a). El corion abandonado por la larva

cuando sale, es muy frecuente de encontrar

como una pequeña cáscara vacía, aplastada, de

color blanco amarillento y con marcas de seg-

mentación sobre ella. Generalmente, este co-

rion se encuentra ubicado algo más

lateralmente que el huevo, por lo que debe ha-

ber un desplazamiento del primer instar a

medida que va mudando y desprendiéndose de

la envoltura del huevo.

Larvas.

Hemos identificado 4 instars para esta especie

teniendo, el último, dos etapas con carac-

terísticas distintas, una predefecante con una

larva turgente y otra postdefecante con un as-

pecto flácido, debido al vaciamiento del tubo

digestivo antes de entrar en diapausa.

Como no se observaron las mudas, los in-

stars se determinaron en relación con el

tamaño, esclerotización y cambios morfológi-

cos a nivel de los apéndices relacionados con

la alimentación. También se pudo notar un

cambio en la coloración de las larvas que, de

un tenue color rosado, pasaron a tener un color

blanco traslúcido en la forma predefecante y

blanco amarillento en la larva postdefecante.

Los distintos tamaños observados pueden

verse en Tabla 2.

La larva postdefecante, que está inmóvil y

no reacciona frente a estímulos externos, toma

una posición característica dentro de la

celdilla, su extremo posterior hacia la base,

enrollada y con la cabeza dentro de la curva

interna del cuerpo (Fig. 12b). Es de color

amarillento, robusta y algo alargada, presenta

tubérculos dorsales poco protuberantes en los

segmentos torácicos II y III; el III segmento

torácico y del I-IV abdominal con tubérculos

laterales poco prominentes, que van decre-

ciendo en tamaño hacia el extremo posterior.

No hay espículas ni pelos sobre el cuerpo. La

108 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

ONSACM

Figura 12: a) Vista superior de una celdilla que muestra la forma del huevo de Centris mixta y su posición sobre la masa de

alimento. b) la misma vista y la posición característica de la larva post-defecante dentro de la celdilla.

cabeza ampliamente unida al tórax se presenta

como la zona más esclerotizada del cuerpo.

No se observa separación entre tórax y abdo-

men. Los segmentos muestran en la región

tergal divisiones en anillos cefálico y anal

(Fig.13 a). La cabeza aproximadamente trian-

gular, muy pequeña en relación al cuerpo, es

claramente más angosta a la altura de las ar-

ticulaciones mandibulares. Existe sutura epi-

cranial hendida y bastante marcada. El largo

de la cápsula cefálica, medida en la parte cen-

tral, es 1,4 veces mayor que el ancho máximo

(n=1) (Fig. 14). Se observan escasos pelos

dispersos sobre ella, algo más abundantes y

fuertes en el extremo del labio, alrededor de

los palpos labiales, hacia el extremo de las

maxilas y en los bordes distales de los lóbulos

labrales. Presenta esclerotización pigmentada

en el extremo de las mandíbulas, las articu-

laciones y la base de los apodemas mandibu-

lares, sutura hipostomal, sutura pleurostomal,

esclerito del estipe, extremo del salivarium y

las impresiones tentoriales anteriores.

TABLA 2

TAMAÑO DE LOS INSTARS LARVALES DE

C. MIXTA

Estado Promedio Rango (mm) n

(mm)

huevo 2,94 DASS 7)

1% instar 3,10 1

2% instar 4,20 ANNA 3

3% instar 6,16 6,0- 6,4 3

larva predefecante 14,70 13,0-16,0 3

larva postdefecante 17,60 15,0-21,0 6

El tentorio se presenta completo, lleva una

rama dorsal (Fig. 13d, e); las impresiones ten-

toriales anteriores, alargadas longitudinal-

mente, están cerca de las articulaciones

mandibulares anteriores, pero por sobre ellas.

Las impresiones tentoriales posteriores en ubi-

cación normal y esclerosadas.

Reforzamiento posterior de la cabeza bien

marcado, lo mismo que la sutura hipostomal,

la que en conjunto con la sutura pleurostomal

y epistomal forman el reforzamiento inferior

de la cápsula cefálica. La sutura epistomal es

de forma cóncava distalmente, alcanza a llegar

cerca de la articulación mandibular anterior

Chiappa y Toro: Nidificación y estados inmaduros de Centris mixta tamarugalis 109

l3e

Figuras 13a-13e: Larva post-defecante a) vista lateral de la larva completa, b) mandíbula, vista interna a la izquierda y vista

externa a la derecha, c) espiráculo en vista lateral d) tentorio en vista dorsal e) mitad del tentorio en vista lateral para

mostrar el brazo dorsal.

(Fig. 14). Las bandas parietales lineales al-

canzan a la altura del borde superior del

alvéolo. Antenas ubicadas en el 1/4 inferior

de la cara, forman una pequeña protuberancia,

de altura menor al diámetro y un alveólo leve-

mente hendido que forma un surco alrededor.

Cada una presenta tres papilas en el extremo.

Area frontal con dos amplias depresiones

laterales y dos surcos mesales que marcan tres

gruesas protuberancias longitudinales que no

se proyectan más allá de la superficie clipeal.

El clípeo bilobulado, tiene forma cóncava y

lados convergentes hacia el borde distal, es

2,9 veces más ancho que alto y no presenta

tubérculos distales. La sutura labro-clipeal es

subparalela y tiene forma semejante a la cli-

peal.

Las mandíbulas macizas, truncadas, muy

esolerosadas, tienen la cara externa convexa,

110 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figura 14: Cabeza en vista frontal de la larva post-defe-

cante de Centris mixta.

lisa; la interna, cóncava, presenta una carina

casi recta con minúsculos dientes que le dan

un aspecto aserrado. El borde dorsal lleva 4

dientes pequeños y redondeados de tamaño se-

mejante entre ellos. Borde ventral con un

diente corto y redondeado (Fig. 13b).

Corion mandibular amplio y grueso;

diámetro de la base mandibular poco más de

dos veces el borde distal, tiene forma trapezoi-

dal y bordes muy esclerosados, especialmente

donde se encuentran las articulaciones. El es-

clerito labro-maxilar (Michener, 1954) o es-

clerito del estipe (Rozen £ Buchmann, 1990),

es bastante esclerosado y bien notable en esta

especie, termina a veces como una espina

aguda y libre distalmente. Las maxilas car-

nosas tienen los ápices dirigidos mesalmente

con palpos apicales alargados, cada uno con

dos sensillas poco prominentes en el extremo.

La galea es algo más corta que los palpos

maxilares, ubicada muy vecina a ellos pero

algo más dorsal e interna. Lleva dos sensillas

prominentes, algo alargadas, la superior más

larga y aguda que la inferior (Fig. 15). La

hipofaringe de supericie convexa presenta

espículas diminutas distalmente. El labio muy

carnoso y prominente, presenta palpos algo

más cortos que los maxilares; está dividido en

prementón y postmentón por una línea trans-

versal hendida que se observa fácilmente en

vista frontal. La abertura del salivarium, al

extremo del labio, es transversal, proyectada

anteriormente, mide la mitad del ancho

máximo del labio. Presenta bordes sobresa-

lientes esclerosados, cubiertos de una gran

cantidad de pequeñas espículas y sensillas. En

el borde inferior y cerca del ángulo externo,

hay dos conspicuas sensillas alargadas, que al-

canzan la altura de los palpos labiales. En la

abertura salival se observan láminas colocadas

transversalmente, que parecen dirigir la di-

rección de la secreción salival.

Figura 15: larva post-defecante. Vista frontal de

mandíbulas (arriba), maxilas (centro), donde se pueden

ver los palpos y la galea; el labio (abajo) con la abertura

salival y láminas tranversales, también se observan los

palpos labiales bajo el salivarium.

Los espiráculos, dos torácicos y ocho ab-

dominales, son normales en tamaño, redondos,

sin escleritos espiculares, no presentan dife-

rencias entre ellos; sobresalientes y más es-

clerosados que el resto del tegumento, tienen

peritrema bien desarrollado, convexo, trans-

parente; llevan un reborde alrededor (Fig. 16).

Atrium esferoidal y subatrium alargado, am-

bos con anillos y con espinas, las del atrium

más largas que las del subatrium (Fig. 13 c).

El X segmento abdominal es corto, redon-

deado apicalmente, lleva la abertura anal es-

clerosada, transversal y ubicada dorsalmente.

No se pudo apreciar algún tipo de marca o de-

presión en los esternos en que habitualmente

se pueden observar diferencias para determi-

Chiappa y Toro: Nidificación y estados inmaduros de Centris mixta tamarugalis 111

Figura 16: Vista superior de un espiráculo de larva post-

defecante con peritrema bien desarrollado y un reborde al-

rededor.

nar el sexo de las larvas (Nielsen € Bohart,

1967; Duchateau é: van Leeuwen, 1990).

La larva madura de C. mixta conserva la

forma y, aunque no se encuentre dentro de la

celdilla, su extremo posterior no es tan flácido

y tampoco está cubierta con líquido u otro tipo

de cubierta como en C. caesalpiniae u otras

larvas de abejas (Rozen 4 Buchmann, 1990).

La larva concuerda con el grupo II,

propuesto por Michener (1956), en relación a

la especialización que presentarían las larvas

de abejas. De acuerdo a los caracteres enu-

merados por el autor, C. mixta presenta sólo

cuatro de tipo especializado: pelos ausentes

sobre el cuerpo, mandíbula sin forma de

cuchara (las más truncadas de la tribu Centri-

dini) y con cavidad interna claramente de-

finida. Los demás corresponden a caracteres

primitivos de las larvas de Hymenoptera: pre-

sencia de peritrema y los que corresponden a

caracteres modificados en relación al tejido de

un capullo (papilas antenales presentes, palpos

maxilares y labiales largos, maxila y labio no

fusionados, abertura salival amplia y transver-

sal, con bordes sobresalientes y algo es-

clerosado, prementón y postmentón separados)

y mandíbula con borde ancho.

La presencia de gálea (aunque ella no ha

sido reconocida como tal por autores como

Michener, 1954), los ápices de la maxila

dirigidos algo mesalmente, se pueden con-

siderar primitivos debido a que se encuentran,

normalmente, en las tribus no parásitas de An-

thophoridae. Lo mismo ocurre con el esclerito

articular del estipes que separa la maxila del

labio; este engrosamiento no ocurre en los

Apoidea, excepto en el género Centris (Mich-

ener, 1954). En C. mixta es bastante escle-

rosado y termina, a veces, en una espina que

se proyecta más allá de la mandíbula, como

también se observa en C. caesalpiniae (Rozen

óz Buchmann, 1990). Otros caracteres que se

pueden considerar especializados, correspon-

den al labro bilobulado y ausencia de tubércu-

los labrales.

Larvas del 1% 2% y 3% instar con cuerpo

claramente segmentado, robusto, sin divisio-

nes entre cabeza, tórax y abdomen. Cabeza re-

dondeada, tamaño proporcionalmente mayor,

Figura 17: a) Vista frontal de cabeza de larva de 2* Instar; b) Vista lateral de la misma, c) detalle de vista frontal que mues-

tra las mandíbulas, hípofaringe con gran cantidad de espículas y la abertura salival.

112 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

en relación al cuerpo, que en la larva postdefe-

cante; cara más ancha que larga.

Larvas del 1” y 2* instar (Fig. 17a, b.) sin

pigmentación mandibular; labro no bilobu-

lado. Mandíbulas más largas que anchas, cur-

vadas mesalmente, muy agudas, paralelas al

borde del labro, terminadas en un diente en

forma de espina; bordes con espinas que le

dan aspecto aserrado. Hipofaringe con gran

cantidad de espículas prominentes (Fig. 17 c).

Labio y maxilas no tan proyectadas como en

la larva post-defecante.

Larva del 1% instar con maxilas y labio

poco desarrollados.

Tercer instar, con labro bilobulado,

mandíbulas pigmentadas distalmente; diente

de las mandíbulas más corto, presentándose

agudo pero no en espina y bordes menos

aserrados.

Figura 18: a) Vista frontal de cabeza de larva pre-defe-

cante; b) vista frontal de labro, mandíbulas y labio de la

misma larva.

Larva predefecante (Fig. 18 a, b) con

estructuras de la armadura bucal semejante a

la postdefecante pero a diferencia de ella, con

cabeza redondeada, mandíbulas aserradas y

agudas, maxilas y labio no tan prominentes y

cuerpo turgente y de color blanco traslúcido.

Abertura salival con láminas cribadas (Fig. 19

a, b)

Figura 19: a) abertura salival de larva pre-defecante

mostrando las láminas cribadas a través de las cuales

fluye la saliva; b) detalle con mayor aumento de las lámi-

nas, donde se pueden observar los orificios de diferente

diámetro.

Pupas.

La pupa es semejante al adulto en su forma

general, particularmente en el largo de la ar-

madura bucal. Cuerpo sin pelos, las hembras

semejantes a los machos, pero de tamaño lige-

ramente diferente, tanto en vista lateral (hem-

bras. x *="0.99cm 1 = 3 => OO SAO Ac

machos x ="0:9 cm: n= 1 = 090195 %ca"

como en vista dorsal (hembras, x = 0,998 cm;

nes = 0960 cm machos 002

3; r = 0,9-0,95cm).

Pupa macho: Cabeza más larga que ancha

(1,1:1,0); zona clípeofrontal protuberante en

vista lateral, con depresión central-inferior.

Labro triangular, escapo con un pequeño

tubérculo distal externo. Vertex con dos

Chiappa y Toro: Nidificación y estados inmaduros de Centris mixta tamarugalis 113

tubérculos no prominentes que cubren los

ocelos laterales (Fig. 20a). Frente, clípeo,

genas y labro sin tubérculos. Mandíbulas pro-

tuberantes distalmente, en vista lateral, con el

ápice pigmentado; las piezas bucales largas en

su conjunto, sin protuberancias, excepto los

palpos maxilares que muestran los dos últimos

artejos en forma de una protuberancia distal,

doblada en ángulo recto respecto del eje longi-

-tudinal, situación que se presenta en los adul-

tos como una tendencia a tener estos dos pal-

pitos permanentemente doblados en ángulo.

Tórax con tegumento estriado. Angulos la-

terales del pronoto, proyectados en espina,

lóbulos laterales proyectados en tubérculo.

Mesoscuto con dos pares de pequeños tubércu-

los dorsales en la zona media, los anteriores

algo más separados que los posteriores. Es-

cutelo protuberante en vista lateral, dividido

en dos por una línea central, pero sin tubércu-

Figura 20: a) Vista dorsal de pupa macho mostrando los principales caracteres en Centris mixta; b-d) esquemas de patas

posteriores, medias y anteriores, respectivamente, de un macho; e-g) esquemas de patas posteriores, medias y anteriores,

respectivamente, de una hembra.

114 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

los; axilas triangulares, proyectadas a la

misma altura del escutelo. Tégulas con un

pequeño tubérculo rugoso. Alas lisas, sin ru-

gosidades ni tubérculos. Metanoto con una

protuberancia transversal de tegumento liso,

que no alcanza la parte media. Zona central

con un pequeño tubérculo dividido en la

región media, que en vista dorsal semejan dos

dientes truncados.

Patas anteriores (Fig. 20 d), con tegumento

rugoso, excepto en los tarsos. Coxas con larga

espina apical. Trocánter con espina más corta

que la coxal. Fémur sin tubérculos, borde

proximal formando corta espina. Tibia sin

tubérculos, espina distal corta. Basitarso apla-

nado, con el borde externo plegado.

Patas medias (Fig. 20 c) semejantes a las

anteriores, pero espinas más cortas y la tibia

con los bordes externo e interno plegados, al

igual que el basitarso.

Patas posteriores (Fig. 20 b), con las coxas

provista de espina apical, más corta que la de

la pata media. úTrocánter con espina apical

corta y gruesa. Fémur sin tubérculos ni espi-

nas. Tibia con el borde externo sobreponién-

dose al basitarso en forma de una espina larga.

Metasoma con tergo I, con cortas estrías

longitudinales. Borde distal prominente. Ter-

gos IMI-V, con banda distal de espículas dimi-

nutas; borde distal de los tergos IL y IV

estriado; tergos V y VI con espículas algo más

prominentes, y cubriendo 2/3 distales de la su-

perficie.

Esterno I con un pequeño tubérculo medio

en el borde distal, esternos IIl-V con el mismo

tubérculo un poco más desarrollado. Extremo

abdominal sin espina terminal.

Pupa hembra: Es bastante semejante al ma-

cho, excepto porque el tercer par de patas

(Fig. 20f) tiene el basitarso más ancho y por-

que el tamaño de los últimos tarsitos es

menor, estando doblados sobre la sección tran-

versal del basitarso. El esterno V no presenta

tubérculo medio en el borde distal.

La única descripción de pupas del género

Centris es la realizada por Rozen dé

Buchamnn (1990) para C. caesalpiniae. En

relación a ella, C. mixta tiene bastantes seme-

janzas aunque se pueden apreciar algunas dife-

rencias menores como la forma general menos

alargada y más robusta. La separación de los

segmentos metasómicos son menos marcados

y llevan espículas de menor tamaño en los

bordes. La forma de las axilas es triangular y

hay un pequeño tubérculo en el metanoto, en

forma de dientes truncados que no se presen-

tan en la otra especie.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos al Dr. J. Rozen del American

Museum de Nueva York, por las sugerencias

hechas en algunas conversaciones, las cuales

fueron tomadas muy en cuenta en la reali-

zación de nuestro trabajo. Agradecemos a la

Sra Carmen Tobar quien confeccionó los dibu-

jos y al Sr José Morillas quien tomó las foto-

grafías en el microscopio de barrido.

LITERATURA CITADA

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f

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 117-120

UNA NUEVA ESPECIE DE OOGENIUS SOLIER, DE CHILE

(COLEOPTERA: SCARABAEIDAE)

ANTONIO MARTINEZ! Y Luis E. PEÑA qe

RESUMEN

Los autores describen una nueva especie de Oogenius de Chile: O. gutierrezi n.sp.. Es una especie

próxima a O. arrowi Gutiérrez, pero difiere de ésta por la escultura del pronoto y élitros, entre otros

caracteres.

ABSTRACT

The authors describe a new species of Oogenius from Chile: O. gutierrezi n.sp.. This new species is

near to O. arrowi Gutierrez, but differs from it in the shape of the pronotum and elytra, as well as

others characters.

INTRODUCCION

Solier (1851) describe el género Oogenius en

base a la especie O. virens. Posteriormente

Ohaus (1905) crea una nueva especie, O.

chilensis, y Gutiérrez (1949) otras dos: O.

kuscheli y O. arrowi y una subespecie que de-

nominó O. chilensis barrosi. Todas estas

especies han sido encontradas en Chile. Pos-

teriormente, Martínez (1953) describe una

especie proveniente de Mendoza, Argentina,

como O. lariosae, y luego Martínez y Peña

(1990) describen O. castilloi también hallado

en Chile. En esta nueva contribución se

agrega a este género otra especie que hemos

denominado como Oogenius gutierrezi n. sp.

"Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y

Técnicas en el Instituto Entomológico, Rosario de Lerma,

Salta, Argentina

“Instituto de estudios y Publicaciones "Juan I. Molina"

Casilla 2974, Santiago, Chile.

(Recibido: 9 de marzo de 1994. Aceptado: 14 de julio

de 1994)

La biología de este grupo de especies es

muy poco conocida, Peña ha colectado Oo-

genius chilensis Solier, en sus dos subespe-

cies, volando en la madrugada, antes de la

salida del sol, en forma muy rápida y a baja al-

tura, entre matorrales y bosquetes. La especie

que se describe difiere de esta costumbre y se

la encuentra volando de mañana y a primeras

horas de la tarde. Se ha observado que las

hembras se entierran entre unos 10 a 20 cm. en

terrenos arenosos, donde se han visto a la vez

machos en procura de las hembras para allí,

bajo la arena copular.

OOGENIUS GUTIERREZI sp. nov.

Diagnosis: Color negro: de 14 a 15 cm de

largo por un ancho elitral entre 9,8 y 10,2 mm.

Cabeza y pronoto sedosos, posiblemente esta

seda sea caduca. Superficie del pronoto con

dos diferentes puntuaciones. Elitros estriados.

Escudete finamente marginado. Pigidio en-

teramente punteado.

Holotipo Macho: 15 mm. de largo y 10 mm

de ancho.

118 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Coloración: negra con leve tinte, casi ina-

parente, de oliváceo en el dorso, o verdoso

azulado en el pigidio y región ventral de

fémures y abdomen; espolones y último artejo

de los tarsos más o menos rojo píceo. La pi-

losidad que cubre las diferentes regiones del

cuerpo concolor a la pieza donde se inserta.

Cabeza: tan ancha como larga; borde clipeal

semicircular, ligeramente realzado, separado

del clípeo y frente como impresión transversal

marcada, que no alcanza el borde ocular; canto

ocular menor que la mitad del ojo, ápice como

frente y vértice levemente convexos; superfi-

cie del clípeo, sobre el borde libre, finamente

rugosa, intercalándose lateralmente y por de-

trás, puntuación que tiene sedas erectas; esta

misma escultura con las sedas, es hallada en la

impresión transversal que limita el clípeo con

la frente, continuándose los puntos pilíferos en

la frente por delante y sobre el borde ocular; el

resto de la frente y vértice con micropuntos

dispersos y glabros, poco más aproximados en

el vértice canto ocular con algunos puntos

pilíferos látero-distalmente. Región ventral

con la parte anterior del clípeo muy corta y la

superficie con puntos pilíferos espaciados;

labro dorsalmente apenas visible, borde ante-

rior amplio, algo escotado y piloso; maxila

con galea-lacinia denticulada, palpo con el 4?

artejo subigual a las suma de los precedentes y

distalmente con poro sensitivo muy pequeño;

mandíbula lateral y uniformemente arqueada

antena (Fig. 1) con escapo corto y engrosado

distalmente, 2” artejo submoniliforme, 3* al 5*

pequeños, ligeramente más cortos hacia el

último, 6” muy corto y subcupuliforme con

borde distal oblicuamente truncado, 7* discoi-

dal, 8” al 10” con la masa denticular alargada,

pero con su ancho menor que el largo de los 7

artejos precedentes, región sensitiva del 8",

grande, mas no alcanzando los ápices ni distal

de la faz del artejo; gula con pilosidad en el

tercio anterior.

Pronoto: excepto en la región medial anterior

y preescutelar donde es muy borroso, muy fi-

namente marginado; borde anterior en arco

amplio y regular; borde posterior mediana-

mente saliente en lóbulo; ángulos anterior y

posterior marcados, mucho más el primero;

7%

Figura 1: Oogenius gutierrezi sp. nov. , antena

superficie ligeramente irregular y micros-

cópica e irregularmente punteada; los puntos

de dos tipos: unos finos y glabros y otros más

marcados y con una cerda fina, que puede ser

caduca. Proepisterno y proepímero con pilosi-

dad rala y ausente en el borde lateral.

Escutelo: finamente marginado y con algunos

micropuntos irregulares en los 2/3 anteriores o

en la base y ésta cubierta por sedas provenien-

tes del borde distal del pronoto.

Elitros: en conjunto más anchos que el pro-

torax, claramente estriados, estrías marcadas e

irregularmente punteadas; interestría sutural

con algunos puntos marcados irregularmente

dispuestos en hilera longitudinal, las restantes

interestrías aparentemente impunteadas o a ve-

ces con algún micropunto; tubérculo humeral

y callo distal muy poco aparentes; epipleura

sobre el borde dorsal con sedas notables; ápice

distal redondeado o inerme.

Mesosternón: con coxas subcontiguas y cu-

bierto por pilosidad fina y larga, lo mismo que

el mesepisterno.

Metasternón: se insinúa entre las mesocoxas

como región trianguliforme de ápice pequeño

y romo; por detrás con surco medial longitudi-

nal marcado que puede ser un tanto ampliado

en la mitad distal y finalizar en una pequeña

depresión posterior; superficie microscópi-

camente punteada, los puntos pilosos; región

lateral cubierta de pilosidad larga y tupida.

Martínez y Peña: Oogenius gutierrezi, nueva especie de Chile 119

Patas: anteriores con fémur punteado y pi-

loso, tibia poco más corta que el fémur, borde

lateral tridentado, los dos dientes distales bien

grandes, el proximal situado en el tercio poste-

rior y pequeño, distal y medio bien separados

entre sí y el borde liso por detrás del tercer

diente; espolón espiniforme más largo que el

primer artejo tarsal, artejos 1” al 4” cortos,

siendo el 1? apenas más largo que ancho, 2”

tan largo como ancho, 3” y 4” más anchos que

largos y levemente decrecientes en el largo,

pero crecientes en el ancho; 5” más ancho y

largo que todos, algo arqueado e inerme en la

faz ventral; uñas grandes, simples, desiguales,

la mayor kbasalmente acodada; oniquio

pequeño y similar en todas las patas (Fig. 2).

Pata media con coxas subcontiguas; trocanter

y femur cubierto con pilosidad fina y abun-

dante; tibia con insinuación de quillitas late-

rales, y en esa faz lateral, con alguna seda

espinosa proximalmente sobre la quilla ante-

rior, pero sobre el borde lateral o superior,

según sea visto, con seditas espinosas, interna-

mente con 2 Óó 7 cerditas espinosas fuertes,

ápice distal ventro-lateralmente con seditas

espinosas, espolón mayor más largo que los 2

primeros artejos tarsales, algo arqueado y

agudo, espolón menor más corto que dichos

artejos, de conformación similar o poco

achatado pero también más agudo; tarso fili-

forme, más largo que la tibia, el 1” al 4” arte-

jos casi iguales en largo y ancho, 5” subigual a

la suma del 2” al 4” y ventralmente inerme;

uñas desiguales, simples, poco arqueadas y

agudas. Pata metatorácica con trocanter bien

piloso sobre el borde caudal; fémur engrosado,

la faz ventral con puntuación espaciada pero

abundantemente pilosa, aunque mucho menos

que los anteriores y medios; tibia, tarso y uñas

muy similarmente conformados a los del par

precedente.

Abdomen: con el 1” tergito visible solo me-

dialmente como proyección triangulariforme

entre las coxas; los esternos 2” al 4” lateral-

mente más anchos y con hilera transversal de

puntos pilíferos que se pierde mesalmente; 5”

es el más largo de todos, con hilera postmedial

de puntos irregulares y pilíferos perdidos me-

salmente y con membrana sobre el borde cau-

dal; 6” esterno con rugosidad microscópica,

algunas sedas lateralmente, el borde caudal

casi recto, sin insinuarse medialmente una

escotadura clara. Pigidio más ancho que

largo; borde libre finamenté marginado, super-

ficie un tanto convexa, microscópicamente ru-

goso punteada y con pilosidad lateral que es

más neta lateral y distalmente.

Genital: esclerosado, visto dorsalmente con

membrana corta en el ápice del tambor, borde

lateral algo ensanchado hacia la mitad, visto

en forma lateral un tanto sinuoso y con el

ápice aguzado. (Fig. 3)

Comentario: Esta especie puede situarse

cerca de O. kuscheli Gut. y próxima a O. ar-

rowi Gut. La separamos de la primera por la

escultura del pronoto que no es rugosa y de la

segunda por la puntuación del pronoto que en

O. arrowi Gut. es profundamente punteada y

en O. Gutierrezi nov. sp. por haber dos tipos

de puntuación, como se expresa en la descrip-

ción.

Alotipo Y : Muy semejante al macho en forma

y color, pero de mayor tamaño: 18,5 mm. de

largo por 13 mm de ancho. El pronoto es

apreciablemente más voluminoso que en el

macho.

Paratipos: 16 machos de Cerro El Roble

(Caleu) Chacabuco, Chile. Octubre 1992 y 2

hembras y 8 machos del mismo lugar del mes

de Octubre de 1993, todos colectados por Luis

E. Peña G. y Alfredo Ugarte P.

Ubicación de los tipos: Holotipo y dos para-

tipos en el Museo Nacional de Historia Natu-

ral (Santiago-Chile), 3 paratipos machos y una

hembra en la colección de Antonio Martínez

en Rosario de Lerma, (Salta-Argentina),

Alotipo, 21 machos y una hembra en la colec-

ción de Luis E. Peña G. (Santiago-Chile), 2

paratipos en el Peabody Museum of Natural

History at Yale University, (USA) y 2 en el

Field Museum of Natural History, (Chicago-

USA).

Localidad Tipo: Laderas sur orientales del

cerro de El Roble, Caleu, Chacabuco, 1.200 a

1.600 m. de altitud.

120 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Figuras 2 - 3: Oogenius gutierrezi sp.nov. 2, Pata protorácica; 3, Genital del macho, vista dorsal (izquierda) y lateral (dere-

cha)

Nominación: El nombre dado a esta especie

recuerda a nuestro gran amigo Ramón Gu-

tiérrez Alonso, fallecido hace algunas décadas

y que se dedicara intensivamente al estudio de

los Scarabaeidae de Chile.

LITERATURA CITADA

GUTIÉRREZ, R. 1949. Notas sobre Scarabaeidae neotrópi-

cos (Coleoptera Lamellicornea). An. Soc. Cient. Ar-

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Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 121-123

UN NUEVO MASTOGENIUS PARA CHILE (COLEOPTERA: BUPRESTIDAE)

TOMÁS MOORE !

RESUMEN

Se describe un nuevo Mastogenius de Chile M. barrigai n. sp., y se entrega una clave de

identificación para las especies chilenas.

ABSTRACT

A new Mestogenius for Chile, M. barrigai n. sp., is described and a key for the chilean species is

presented.

MASTOGENIUS BARRIGAI n. sp.

Diagnosis (Holotipo macho): Cabeza ancha,

impresa al medio; escultura gruesa puntiforme

con corta pilosidad blanca rala; ojos alar-

- gados, no salientes, más próximos hacia el

vértex, con el borde interno curvo; antenas

- muy pilosas y largas que llegan con su ápice al

cuarto basal de los élitros; pedicelo subcilín-

drico, tercer antenito 2 veces más largo que el

anterior; cuarto a décimoprimero lobulados

subiguales, 4 veces más largos que anchos,

con pilosidad blanca abundante; último an-

tenito 5 veces más largo que ancho.

Pronoto más estrecho que los élitros, negro-

dorado brillante; puntuación pequeña,

espaciada hacia los lados, con dos hoyuelos

redondos en la mitad anterior, algo aproxi-

mados entre si; lados estrechados en curva

hacia ambos extremos, especialmente hacia la

base, dejando expuesto el ribete de la carena

prosternal; margen anterior recto con fino

ribete; margen basal con ancha banda lisa y

brillante, algo más ancha en la zona media.

¡Sociedad Chilena de Entomología, Casilla 21132,

Santiago - Chile.

(Recibido: 14 de marzo de 1994. Aceptado: 7 de sep-

tiembre de 1994)

Elitros de lados subparalelos, más anchos

en la zona media que en la base; apice redon-

deado, oblícuamente terminado; escultura pun-

tiforme aislada, más abigarrada e irregular en

la mitad posterior.

Faz inferior negro brillante con escultura

más densa en el tórax; último esternito ab-

dominal truncado rectamente.

Edeago esclerosado, muy robusto y corto,

con parámeros de lados subparalelos termi-

nados apicalmente en una pequeña prolon-

gación externa y otra interna; pene largo

cuneiforme de lados levemente curvos, con

extremo redondeado y romo.(Fig.2).

Hembra: Similar al macho pero con antenas

poco pilosas y con los artículos lobulados casi

iguales en ancho y largo, alcanzando con su

ápice sólo el cuarto basal del pronoto. Ovi-

positor membranoso, margen superior con

abundantes sedas marrón; estilos internos muy

esclerosados y robustos (Fig.3).

Distribución geográfica: Región de Co-

quimbo (IV Región) Provincia de Elqui en la

zona litoral (Choros Bajos, La Higuera y Ton-

goy) (Fig- 4).

Hospedero: desconocido; los ejemplares

colectados por don Juan E. Barriga, fueron en-

122 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

lmm

a

0.1 mm

0.25 mm

Figuras 1 - 3: Mastogenius barrigai n.sp.1, Silueta del Holotipo; 2, silueta del edeago; 3, silueta del ovipositor.

contrados sobre Adesmia microphylla H. et A.

y Senna cumminglii (H. et A.) Irwin et Barn.

Material estudiado: Holotipo (macho) y

Alotipo (hembra) de La Higuera, 20/1/1991,

coll. J.E. Barriga (Holotipo en el Museo Na-

cional de Historia Natural, Santiago - Chile y

Alotipo en la colección del autor). Paratipos

(11 machos y 14 hembras): 4 de La Higuera

20/1/1991, coll. J.E. Barriga (colección del

autor); 8 con los mismos datos (colección J.E.

Barriga); 3 de igual localidad, Noviembre

1991, leg. J.L. Henríquez (colección del

autor); 2 de la misma localidad, Marzo 1993,

coll. J.E. Barriga (colección del autor); 4 de

Choros Bajos, 17/11/ 1993, coll. J.E. Barriga

(2 en la colección del autor y 2 en la de J.E.

Barriga); 4 de Tongoy, Noviembre 1987, coll.

J.E. Barriga (2 en colección del autor y 2 en

colección J.E. Barriga).

Etimología: dedicada al Ing. Agr. Juan Enri-

que Barriga, gran estudioso de la entomofauna

chilena.

Comentarios: especie de coloración general

negro-dorada, que se diferencia notablemente

de M. parallelus Solier y de M. sulcicollis

Phil. € Phil., por la forma del pronoto, estre-

chado fuertemente en curva tanto anterior

como posteriormente, siendo en su base mas

estrecho que el ancho basal de los élitros. Muy

28

30==

32---

34

q SS

[es]

7

38 E

JUNE

40 a

ANS

6 o) M. laevifrons Germ. $ Kerr. *

M. parallelus Solier

M. barrigai Moore

HE M.sulcicollis Philippi y Philippi

Figura 4: Distribución geográfica de las especies de Mas-

togenius en Chile.

Tomás Moore: Nuevo Mastogenius para Chile 123

parecido a M. laevifrons Germ. é Kerr., del

cual difiere por tener dos hoyuelos poco pro-

fundos sobre el disco del pronoto y por la

longitud de las antenas, especialmente de los

machos, las cuales alcanzan el cuarto basal de

los élitros. La pilosidad de M, laevifrons y M.

barrigai es invisible a bajo aumento (10X),

considerándose para fines prácticos como

especies glabras en la clave de identificación.

Antecedentes de las especies de Mastogenius

previamente conocidas para Chile, se pueden

encontrar en los aportes de Cobos (19509,

1981) y Moore (1985).

CLAVE PARA LAS ESPECIES CHILENAS

DEL GENERO MASTOGENIUS SOLIER

1 Base pronotal más estrecha que la base de los

élitros. Cuerpo 4 veces más largo que ancho.

ESPECIES Lara o a olla vd 2

1 Base pronotal tan ancha en su base como los

élitros. Cuerpo cuando más 3 veces más largo que

ancho. Especies notoriamente peludas dorsal-

2(1) Pronoto más largo que ancho, liso y sin hoyuelos

discales. Antenas del macho llegan con su ápice a

la a A

E IIS ee laevifrons Germ. 8 Kerr.

2 Pronoto nunca más largo que ancho y con dos

hoyuelos discales; antenas del macho muy largas

alcanzando con su ápice al cuarto basal de los

O A barrigai n.sp.

3(1”) Frente sinuada por foseta profunda. Antenas del

macho sobrepasan la base pronotal con 2 artejos

apicales; pronoto estrechado en suave curva hacia

adelante, con su máxima anchura sobre el tercio

posterior; quillas notopleurales invisibles por en-

cima; surco pronotal longitudinal mediano más o

menos entero; escultura del pronoto formando

arrugas escamosas en la zona discal. ...........

A sulcicollis Phil.8z Phil.

Sy Frente aplanada con una pequeña foseta poco pro-

funda; antenas del macho sobrepasan la base del

pronoto a lo más con un artejo terminal; pronoto

estrechado hacia atrás, con su máxima anchura so-

bre el tercio anterior; quillas notopleurales visibles

por encima en el cuarto basal de los costados;

disco pronotal sin surco mediano y escultura regu-

lar formada por puntos más o menos aislados. ....

O OS Ue Sie ia o parallelus Solier

LITERATURA CITADA

Coños S., A. 1959. Octava nota sobre bupréstidos neo-

tropicales. Bull. Inst. r. sc. Nat. Belg., 35(2): 14.

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Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 125-134

AJUSTE GENITAL EN LA COPULA DE THYNNINAE (HYMENOPTERA: TIPHIIDA E)

PARTE Il: ELAPHROPTERA NIGRIPENNIS (SMITH)!

HAROLDO Toro? Y SERGIO ELORTEGUÍ”

RESUMEN

La cópula forética de los tínidos tiene consecuencias importantes para la biología tanto de machos

como de hembras. El sistema mecánico que permite el ajuste genital en Elaphroptera nigripennis se

basa en la elasticidad del digitus que rodea el margen distal del esterno VI y en la forma helicoidal

del pene, éste es fijado por una lámina membranosa que cubre la entrada del conducto de la

espermoteca. Se describe el mecanismo que proyecta la cápsula genital y protuye el pene. Se hace

una comparación con el ajuste genital de Elaphroptera scoliaeformis.

ABSTRACT

The phoretic copulation of thynnine wasps has several important consequenses in the biology of both

female and male specimens. The mechanichal systems that makes the genital locking posible relies

on the elasticity of the digitus embracing the distal margin of sternun VI and the shape of the penis,

which is twisted and fixed by a membranous lamina covering the spermathecal ductus. The

mechanism that projects the genital capsule and protrudes the penis is described. A comparisson

with the genital locking of E. scoliaeformis is made.

INTRODUCCION

Aunque la sistemática de los Thynninae

chilenos han logrado un avance realmente im-

portante con los recientes trabajos de Kimsey

(1992) y Genise y Kimsey (1993), muchos as-

pectos de su biología son desconocidos en su

mayor parte o conocidos sólo superficial-

mente.

Dentro de estos últimos, si bien la cópula

forética ha llamado la atención desde antiguo

(Spinola, 1851), hay escasos trabajos referidos

al mecanismo de ajuste de las especies de esta

región (Evans, 1969; Toro et al., 1979; Toro y

lFinaciado por Dirección General de Investigaciones

de la Univ. Católica de Valparaíso.

Zoología, Universidad Católica de Valparaíso, Casilla

4059, Valparaíso-Chile.

(Recibido: 4 de Agosto de 1994. Aceptado: 2 de

Noviembre de 1994)

Carvajal, 1989). El hecho es debido probable-

mente a la dificultad que existe de realizar

disecciones de estructuras pequeñas, particu-

larmente de la musculatura que interviene y

que hace posible la comprensión del mecanis-

mo en cuanto a las presiones que ejercen las

distintas partes.

Desde el punto de vista biológico, la cópula

forética tiene un significado interesante tanto

como estrategia reproductiva que evita compe-

tencia y asegura la descendencia por manten-

ción de una posición por largo tiempo (Parker,

1970), así como también por la posibilidad de

alimentación de las hembras con substancias

dulces, las que no podrían alcanzar por sus

propios medios (Given, 1954; Ridsdill Smith,

1970). No cabe duda también que el trans-

porte facilita la dispersión geográfica de las

hembras, que carecen de buenas estructuras

para desplazarse a distancias mayores, pudien-

do encontrar áreas con nuevos recursos para

los juveniles.

126 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

El objeto de este trabajo, es continuar con

el estudio del mecanismo de ajuste genital en

Thynninae, realizando un análisis de las

estructuras que intervienen en el ajuste de

Elaphroptera nigripennis (Smith). Los

machos de esta especie son muy frecuentes en

la parte centro sur de Chile, sin embargo no es

fácil encontrar ejemplares apareados en las

colecciones.

MATERIALES Y METODOS

Se dispuso de abundantes individuos machos,

doce hembras y cuatro ejemplares en cópula,

todos secos, conservados en sobres o clavados

en alfileres de la Colección de la Universidad

Católica de Valparaíso. La estructura de la

cápsula genital del macho y esternos aso-

ciados, así como la de la cámara genital de la

hembra, se estudiaron mediante disecciones de

material, tanto seco como tratados con una

solución de KOH al 10%, hirviendo por 6 a 10

minutos. Las parejas en cópula fueron someti-

das a disección en seco.

Cuando fué necesario las disecciones de

estructuras esclerosadas como las de muscula-

tura se realizaron fijando el material seco a un

portaobjetos mediante un pegamento instan-

táneo gel.

El material disectado fué sometido a baños

de agua tibia, cuando se necesitó entender al-

gún ajuste o movimiento de las piezas.

En las descripciones se sigue en general el

mismo esquema de Toro y Carvajal (1989),

para facilitar posible comparaciones. Sólo se

describen aquellas estructuras relacionadas

con el mecanismo de ajuste, no fueron anali-

zadas las otras modificaciones que no tienen

una participación directa el problema. En la

confección de los esquemas se utilizó el apa-

rato de dibujo de lupa Wild MS.

RESULTADOS Y DISCUSION

Macho

El tergo metasómico VII, así como el esterno

VII y VII de los machos participan en cierto

grado en el ajuste genital.

El tergo VII diferencia una placa dorsal,

limitada lateralmente por una cresta bien mar-

cada, que aumenta su resistencia mecánica a la

flexión; el tergo termina distalmente en un

margen levemente cóncavo (Fig. 18).

El esterno VII (Fig. 4), de aspecto general

cuadrangular, presenta el borde distal fuerte-

mente emarginado y un gran apodema proxi-

mal, a cada lado, donde se insertan

externamente los músculos protractores origi-

nados en el esterno anterior.

El esterno VIII (Figs. 5-6), tiene aspecto

general de una cruz, con una superficie cón-

cava proximalmente; el ápice distal se

proyecta en un proceso agudo central y dos

menores dispuestos lateralmente. La barra

transversal de la cruz corresponde a los apode-

mas, fijos a las proyecciones membranosas del

tergo VIII (Fig.18). Los apodemas se encuen-

tran también relacionados con los músculos

retractores del esterno (Fig. 18- mro 1,2,3). El

extremo proximal termina en una punta trun-

cada, su superficie externa es convexa y en él

se inserta un poderoso músculo rotador que se

origina en el tergo VII membranoso (Fig. 18,

mrs 2).

Durante la cópula el esterno VIII se re-

laciona con el último tergo de la hembra (Fig.

19, st VIID), tal como lo describe Evans (1969)

y Toro y Carvajal (1989) para E. scoliaefor-

mis.

La cápsula genital del macho es altamente

complicada, principalmente a nivel del pene y

de las valvas (Figs. 1-2-3). La gonobase (gb)

es más bien corta en vista ventral, rodeando

posteriormente al foramen genital que se abre

hacia la región ventral. Los gonocoxitos (cx),

se alargan mesalmente en vista dorsal; en su

parte media se ubican lateralmente los gonos-

tilos: largos, pilosos, deprimidos lateralmente

y de forma rectangular. En el borde lateral in-

terno del gonostilo se inserta el músculo aduc-

tor, que se origina en las paredes laterales de

los gonocoxitos (Fig. 13, madg).

Las prolongaciones medio-dorsales del

gonocoxito se prolongan hasta la base del

pene; ellas se diferencian como un par de cor-

dones que se abren mesobasalmente y están

limitados de forma posterolateral por un fuerte

surco; distalmente los cordones se dividen por

una fuerte escotadura en forma de V (Figs. 1-

SICA):

Ventralmente las volsellas (cuspis), (Figs.

2-3-13, vo), ocupan el espacio dejado por los

Toro y Elortegui: Ajuste genital en la cópula de Elaphroptera nigripennis 127

gonocoxitos, su parte media es notoriamente

deprimida de tal manera que ambas volsellas

forman una superficie marcadamente cóncava

por su cara ventral; terminan fuertemente es-

clerosadas, aplanadas en dos procesos agudos

que forman una V y se proyectan lateralmente,

siendo entre sí separadas por un surco bien de-

finido.

Sobre las volsellas, por encima de la base

de los gonostilos, se originan dos fuertes

procesos cilíndricos articulados, que se ade-

lantan horizontalmente, con marcada curvatura

hacia la línea media de la cápsula (digitus de

Kimsey, 1992)(Fig. 3, dg). En la base de ellos

se inserta un músculo elevador-abductor, de

origen en la base de los gonocoxitos (Fig. 13,

mabd).

Las valvas (Figs. 1-2, va) se prolongan dis-

talmente hasta articular con la porción flagelar

del pene (pe); ventralmente originan sendos

procesos (Fig. 3, pv), que se agudizan a

medida que descienden de forma perpendicu-

lar a la cápsula. Estructuralmente, los

procesos, poseen dos cordones longitudinales,

que actúan como líneas de resistencia, fuerte-

mente esclerosados, ubicados externa e inter-

namente y separados por una franja

membranosa (Fig. 13, pv).

Los procesos de las valvas son de gran im-

portancia en el ajuste; se articulan en el borde

externo de la base, a través de un cóndilo, con

dos procesos auriculares; los cuales están cur-

vados lateralmente en semicírculo, con direc-

ción dorsal y terminados en ápice agudo (Figs.

19-21-22, pa). En conjunto ambos procesos

valvares forman basalmente un espacio donde

se aloja la base del pene.

La base dorsal de las valvas, de superficie

levemente cóncava y fuertemente esclerosada,

se encuentra ajustada medialmente por las

proyecciones laterales de las volsellas y pos-

terodorsalmente por la porción distal de los

gonocoxitos. La base dorsal de las valvas se

une, a través de conecciones de tipo membra-

noso, con los procesos auriculares y ventrales

de las valvas.

Los procesos ventrales y la base dorsal de

las valvas (Fig. 14) se continúan ingresando

en la cápsula a través de franjas fuertemente

esclerosadas, que conforman un apodema a

cada lado (Figs. 21-22, apv). Este presenta

una marcada curvatura hacia arriba, en forma

de semicírculo; en su extremo se inserta un

poderoso músculo (Fig. 14, mabv), que protrae

el pene por abducción de las valvas y, un mús-

culo elevador de las valvas (Fig. 14, mev), in-

serto en los procesos ventrales y originado

dorsal y lateralmente en el interior de los

gonocoxitos.

Los músculos retractores de las valvas (Fig.

14, mrv), son comparativamente débiles, sus

fibras se originan en la línea media de la por-

ción pósterosuperior de los gonocoxitos.

Estos músculos se insertan en la escotadura de

dos procesos, dispuestos en forma paralela, en

el borde interno de la base de los apodemas,

continuándose de forma esclerosada hasta la

porción dorsal de la base del pene, a través de

una cavidad cerrada formada por la base dor-

sal de las valvas.

Hembra

En la hembra el tergo VI es fuertemente es-

clerosado (Figs. 8-9, tgVI), convexo, termi-

nado en borde agudo, con estrías

longitudinales marcadas en la mitad distal;

distalmente lleva un fuerte surco a los lados

para los procesos laminares del último esterno,

proximalmente presenta apodemas para la in-

serción de los músculos protractores, origi-

nados en el tergo anterior.

El esterno VI (Figs. 7 y 9, stVI), es alar-

gado; proximalmente presenta grandes apode-

mas para inserción de los músculos

protractores originados en el esterno anterior

(Fig. 15, mps); dos débiles fascículos ele-

vadores externos (Fig. 15, mes 2), de origen

en el esterno anterior e internamente un mús-

culo que hace descender el esterno, abriendo

la entrada a la cámara genital (Fig. 15, mabs).

Los músculos retractores corresponden a

dos fascículos de origen en el esterno anterior,

que se insertan en el borde medio-posterior

(Fig. 15, mr). En la escotadura posterior del

margen lateral se insertan dos músculos, uno a

cada lado, que ayudan a elevar y retraer al est-

erno, tienen su origen en el tergo VI (Fig. 15,

mes 1).

Distalmente el margen del esterno presenta

dos procesos laminares (Figs. 11-12, plm), que

se ajustan a los surcos del último tergo, el re-

borde ventral presenta externamente un ángulo

128 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

pronunciado, con respecto al cuerpo del es-

terno. Este reborde es importante en el ajuste

del digitus del macho (Figs. 7, 10 y 19).

La cámara genital (Fig. 11, gc), se hace evi-

dente cuando el último esterno desciende res-

pecto al último tergo, previa protrusión de

ambos (a diferencia de lo descrito para E.

scoliaeformis). El margen posterior medio del

esterno se refleja hacia adentro en una placa

ventral, llamada phragma por Evans (1969)

(Fig. 12, plv). Esta deja entre ella y la pared

externa del esterno un espacio donde se ubica

la abertura del conducto de la espermoteca

(Figs. 12 y 19, ce). La pared ventral, en la mi-

tad distal, forma una suave depresión membra-

nosa abierta hacia adelante, que durante la

cópula se dispone rodeando la porción distal,

en forma de Y, de los gonocoxitos (Fig. 12,

dex). La pared dorsal de la cámara está cons-

tituída por una membrana dorsal y los rami del

aparato picador (Fig. 11, ra, nad), estos se en-

cuentran unidos por un puente esclerosado.

Cuando el último esterno no ha descendido,

la pared dorsal de la cámara no aparece con-

formada y corresponde sólo a un espacio

abierto, posterior a las valvas del aguijón;

estas estructuras están orientadas ventralmente

entre los procesos laminares.

Aspectos funcionales

Aparte del rol que puedan desempeñar las

presiones de los líquidos internos, que no han

sido estudiadas en el presente trabajo, el inicio

del ajuste genital parece depender fundamen-

talmente del descenso del último esterno de la

hembra, previa protrusión junto con el último

tergo y, de la rotación del esterno VIII del ma-

cho.

La protracción del último tergo y esterno de

la hembra se produce por la contracción de los

músculos protractores, insertos en sus apode-

mas respectivos. IASu vVeziMelt esterno

desciende por la contracción de un músculo

inserto en los bordes internos de sus apode-

mas, abriendo la entrada a la cámara genital

(Figs. 16-17).

Los hemitergitos, asociados al aguijón,

mantienen su posición junto al último tergo,

unidos dorsal y lateralmente por ligamentos de

origen membranoso.

Tomando como punto fijo el esterno, que ha

descendido, las valvas y los rami hacen una

semirotación, describiendo un ángulo desde su

posición ventral, para constituir la pared dor-

sal de la cámara genital; los desplazamientos

se hacen más acentuados con la entrada de los

grandes procesos ventrales de las valvas del

macho.

El reborde ventral del esterno VI se ajusta

sobre la porción distal de las prolongaciones

mediodistales de los gonocoxitos, éstas al in-

gresar abducen los procesos laminares. Por

otra parte, por abajo del esterno, en el ángulo

que forma el reborde, se enganchan firme-

mente los digitus, gracias a un mecanismo

elástico propio (Fig. 19) (la apertura previa se

realiza por contracción de sus abductores, Fig.

13, mabd). Este mecanismo corresponde a un

primer factor de mantención del ajuste, espe-

cialmente importante, porque no parece signi-

ficar gasto de energía, al ser producido por la

elasticidad del tegumento.

En el macho el mayor rol de la protracción

de la cápsula, lo juega el músculo tergosternal

(Fig. 18, mrs2) de origen en la porción mem-

branosa del tergo metasómico VIII; éste se

mantiene fijo por su amplia unión con el tergo

VII. El músculo tergosternal actúa como ro-

tador del esterno correspondiente, dada su in-

serción en la proyección proximal.

La proyección distal del octavo esterno

hace que su proceso distal se deslice sobre el

último tergo de la hembra; la posición incli-

nada del tergo, actuando como plano incli-

nado, favorece también la rotación del octavo

esterno del macho, tomando como eje la fi-

jación de los apodemas y teniendo como

apoyo ventral la escotadura del esterno VII

(Figs. 18-19)

La rotación del VIII esterno es un factor de

primera importancia en la cópula, ya que al gi-

rar, su proyección media-posterior se ajusta al

surco ventral de la gonobase y empuja a la

cápsula genital haciéndola protruir. Estando

contraído el músculo tergosternal, los múscu-

los retractores del esterno VIII actúan como

depresores, presionando el esterno sobre el

último tergo de la hembra (Fig. 18)

Los gonostilos, como dice Evans (1969),

abrazan el último tergo de la hembra y poseen

abundante pilosidad rígida; la contracción de

Toro y Elortegui: Ajuste genital en la cópula de Elaphroptera nigripennis 129

los músculos de su base (Fig. 13, madg), per-

miten cierta presión, aunque por cierto, no im-

portante en la mantención del ajuste debido a

la corta distancia entre la inserción del mús-

culo y el punto fijo de articulación, comparado

con la gran superficie del gosnostilo. Su im-

portancia podría estar en evitar dislocaciones,

por movimientos laterales durante el vuelo, o

para dirigir, junto con el esterno VIII, el en-

caje del borde distal del último tergo de la

hembra, en la depresión que forman ventral-

mente las volsellas (Fig. 19).

La intromisión de la cápsula en la cámara

genital de la hembra, continúa hasta que los

procesos laminares del esterno VI (de la hem-

bra), calzan con el surco lateral, que deja la

unión de la base de los digitus con las proyec-

ciones laterales de las volsellas y el borde dis-

tal del último tergo de la hembra ocupa la

depresión ventral de las volsellas (Fig. 19),

ambos sistemas sirven de tope, evitando un

avance posterior que impediría encontrar la

entrada al conducto de la espermoteca.

La forma particular de los apodemas de las

valvas (Fig. 21), determina que la contracción

de los músculos insertos en su ápice y en su

base (Fig. 14, mabv y mev), produzcan una

semi-rotación del apodema, tomando como su-

perficie fija de sustentación la base dorsal de

las valvas, sujetas mediodorsalmente por las

proyecciones de los gonocoxitos. Ventral-

mente la base de los apodemas pivotea y se

desliza sobre la faz interna de las volsellas

(que se encuentran fuertemente esclerosadas).

Estos rotación y deslizamiento tiene las

siguientes consecuencias: a) la línea es-

clerosada interna de los procesos ventrales se

adelanta respecto de la externa abduciéndolos

y causando, por lo tanto la protracción del

pene (Fig. 22), b) rotación que eleva los

procesos ventrales de las valvas (Fig.20), lo

que provoca un descenso y rotación hacia la

línea media de los procesos auriculares (unión

membranosa), éstas a su vez presionan la base

del pene haciéndola descender (Fig. 22).

El flagelo del pene ha sido comparado con

una espiritrompa por Janvier (1933), por su

forma algo enrollada, la fuerte rigidez que pre-

senta le permite mantener su forma. El pene

ingresa a la cámara de delante hacia atrás, en

el espacio dejado por la placa ventral del

último esterno de la hembra, la misma rigidez

permite que funcione al mismo tiempo como

estructura de fijación (Fig. 19).

El primer tercio del pene ingresa siguiendo

la dirección de los procesos ventrales de las

valvas, estos procesos constituyen un impor-

tante mecanismo, tanto de ingreso, conforma-

ción de la cámara genital, como de fijación

durante la cópula. Los procesos ventrales son

las primeras estructuras del macho, junto con

el esterno VIII, en enfrentar el ajuste genital;

su extremo agudo ingresa en forma de cuña (a

manera de calzador) y se ajusta por atrás de la

barra esclerosada dispuesta entre los rami del

aguijón, desplazando aun más los hemitergitos

a una posición dorsal, conformando definiti-

vamente el techo de la cámara genital; esto

evita cualquier dislocación del pene por des-

plazamiento ventral (Fig. 19).

Los procesos auriculares de las valvas,

tienen una función principal en el descenso del

pene, no así en evitar la salida de la cápsula

(como lo descrito para E. scoliaeformis), aun

cuando acomodan su ápice en las paredes la-

terales de la cámara para evitar la elevación

del pene. La función de retener la cápsula re-

cae en los dígitus, que rodean el reborde ven-

tral del esterno de la hembra, impidiendo el

retroceso de la cápsula.

La liberación del ajuste genital suponemos

que se debe, respondiendo a presión de la

hembra, a una pequeña protracción de la cáp-

sula genital del macho, producida por presión

del esterno VIII (contracción del músculo ter-

gosternal). Luego de esto los músculos ele-

vadores y abductores del digitus se contraen

liberando el esterno de la hembra, seguido de

una nueva contraccción de los músculos inser-

tos en los apodemas de las valvas, dando paso

a la retirada de los procesos ventrales de las

valvas y del aedeagus.

Es interesante notar que la mantención del

ajuste en la cópula forética ocurre con poca

participación de músculos en contracción per-

manente, jugando un importante rol la elastici-

dad del tegumento.

130 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

LITERATURA CITADA

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Elaphroptera nigripennis, macho: Fig. 1, 2 y 3 cápsula genital en vista dorsal, ventral y lateral respectivamente: cx = gono-

coxitos; dg = digitus; gb = gonobase, gnt = gonostilus; pa = procesos auriculares; pe = pene; pv = procesos ventrales; va =

valvas del pene; vo = volsellas.

Toro y Elortegui: Ajuste genital en la cópula de Elaphroptera nigripennis 131

st VII

Elaphroptera nigripennis: Fig. 4, macho, VII esterno; Fig.5 vista ventral del VIII esterno del macho; Fig.6, vista lateral del

VIII esterno del macho, Fig. 7, esterno VI de la hembra en vista ventral; Fig. 8, tergo VI de la hembra en vista dorsal; Fig.

9, vista externa lateral del VI segmento metasómico de la hembra; Fig. 10, vista lateral del ápice del abdomen de la hembra

cuando se ha sacado el VI tergo. lg = ligamento; plm = procesos laminares; sp = espiráculo; va = valvas del aguijón.

>

152 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

tg VI

dex

ra

0.5mm.

Elaphroptera nigripennis: Fig. 11, vista posterior del ápice del abdomen de la hembra, habiendo rotado el aguijón de manera

de formar la cámara genital; Fig. 12, cara interna del último esterno de la hembra, mostrando la cavidad para alojar el pene y

la entrada al conducto de la espermoteca; Figs. 13 y 14, cápsula genital abierta, mostrando las relaciones de los procesos

ventrales de las valvas con la musculatura y la base del pene.

apv = apodemas de las valvas; ce = conducto de la espermoteca; cg = cámara genital; dex = depresión para los gonocoxitos,

dg = digitus; gnt = gonostilus; mabd = músculo abductor del digitus; mabv = músculo abductor de las valvas; madg = mús-

culo aductor del gonostilus; mev = músculo elevador de las valvas; mrv = músculo retractor de:la volsella; nad = aguijón; pa

= procesos auriculares; pe = pene; plm = procesos laminares; plv = placa ventral; pv = procesos ventrales; ra = rami; tg =

tergo; vo = volsellas.

Toro y Elortegui: Ajuste genital en la cópula de Elaphroptera nigripennis 133

mpt (3)

tg VIII

st VIII mro 3 mro 2

st VII

Elaphroptera nigripennis: Fig. 15, musculatura del segmento VI de la hembra; Fig. 16, último segmento de la hembra

mostrando las relaciones de las estructura en reposo. Fig. 17, último segmento de la hembra mostrando las relaciones de las

estructuras protraídas y formación de la camara genital. Fig. 18, esquema de las relaciones de la musculatura del VIII est-

erno que protrae la cápsula genital.

mabs = músculo abductor del esterno VI; mro 1, 2, 3 = rotadores del esterno VIII y retractores de la cápsula genital; mr =

músculo retractor del esterno; mabs = músculo abductor del esterno VI; mes 1 y mes 2 = músculos elevadores del esterno

VI; mps = músculo protractor del esterno VI; mpt = músculo protractor del tergo; mrs 2 = músculo tergosternal rotador del

esterno VIII y protractor de la cápsula (en el esquema no se ha indicado el origen en el tergo); mrt = músculo retractor del

tergo VIII.

134 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

st VIII N

Elaphroptera nigripennis: Fig. 19, relaciones de las estructuras de macho y hembra en el ajuste genital; Fig. 20, esquema de

los movimientos del proceso ventral de las valvas del pene y su acción sobre el proceso auricular; Fig. 21, relaciones del

proceso ventral de las valvas con la base del pene, en estado de reposo; Fig. 22, estado de protracción del pene que se ob-

tiene por acción de la musculatura sobre la base de las valvas, haciendo rotar ligeramente los proceso ventrales.

apv = apodemas de las valvas; ce = conducto de la espermoteca; dg = digitus; pa = procesos auriculares; pe = pene, pv =

procesos ventrales; ra = rami.

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 135-164

INSECTOS DE FOLLAJE DE BOSQUES PANTANOSOS DEL NORTE CHICO,

CENTRO Y SUR DE CHILE!'

JAIME SOLERVICENS? Y MARIO ELGUETA?

: RESUMEN

Durante el periodo de primavera y verano de 1991 - 1992, se estudiaron un conjunto de bosques

pantanosos, distribuídos entre la IV y X regiones de Chile (31? 34” - 39* 41” S), con el fin de

caracterizar su fauna de insectos de follaje y de apreciar su variación latitudinal. Cada bosque fué

muestreado por un tiempo aproximado de 3 horas, utilizando el método de sacudido de follaje. Se

recolectaron 10.505 especímenes, pertenecientes a 98 familias y 654 especies. Coleoptera representa

el 71,86% y Hemiptera el 20,33% del total. La aplicación de índices de similitud de Jacccard y

Winer, permite distinguir dos subgrupos en el conjunto de bosques sureños: uno de la zona del Maule

y el otro de la zona valdiviana. Los bosques del área del Maule exhiben mayor diversividad y

abundancia de insectos, probablemente debido a su situación geográfica, que permite penetración de

elementos propios de ambientes esclerófilos, así como también de aquellos presentes en bosques de

Nothofagus. En general los bosques no presentan una fauna propia de insectos, y su composición está

dada principalmente por elementos presentes en otras formaciones vegetacionales locales; sin

embargo se presentan en forma constante y característica, representantes de especies asociadas a

ambientes húmedos y a especies de Myrtaceas.

ABSTRACT

During spring and summer 1991 - 1992, 131 hydrophilous forests distributed between IV and X

regions in Chile (31%34” - 39%41” S), were studied to characterize their foliage insect fauna and

appreciate its latitudinal variation. Each forest was sampled during approximately 5 hours using the

beating sheet. 10505 insects were obtained belonging to 98 families and 654 species. Coleoptera

represented 71.86% and Hemiptera 20.33% of the total fauna. Similarity indices after Jaccard and

Winer recognized two groups of forests: the Norte Chico and V region ones and the southern ones.

Jaccard index distinguished two subgroups in the southern forests: the Maule and the valdivian ones.

The Maule's forests showed the greater diversity and abundance of insects probably by their

geographical situation that allows them to receive sclerophilous and Nothofagus forest elements.

In general, the forests do not showed a specialized insect fauna, which is composed principally by

elements present in other local vegetational formations. However, some species associated to wet

habitats and Myrtaceae species were constantly present and characteristics.

INTRODUCCION

Los bosques húmedos siempre verdes de

mirtáceas se distribuyen discontinuamente en

IProyecto 91-186 financiado por FONDECYT.

“Instituto de Entomología, Universidad Metropolitana

de Ciencias de la Educación. Casilla 147, Santiago, Chile.

Sección Entomología, Museo Nacional de Historia

Natural. Casilla 787, Santiago-Chile.

(Recibido: 3 de octubre de 1994. Aceptado: 18 de

noviembre de 1994)

pequeñas unidades en el Norte Chico, Chile

Central y Sur. Numerosos autores han estu-

diado estas formaciones vegetacionales entre

los que se puede mencionar a Villagrán

(1982), Ferriere (1982), Ramirez et al. (1983),

San Martin et al. (1988, 1990). La existencia

de los bosques está determinada por un

abastecimiento de agua abundante y perma-

nente la que proviene normalmente de napas

subterráneas. Esta dependencia de condicio-

nes de humedad del suelo sugiere que la

136 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

comunidad siempre fue discontinua (Villa-

grán, op. cit.). En cuanto a su origen, Villa-

grán (op. cit.) postula que estos bosques

constituyen la fase forestal de una sucesión

vegetacional iniciada en comunidades abiertas

pantanosas de Gunnera y Blechnum, fenómeno

que habría ocurrido durante el Pleistoceno su-

perior y el Holoceno.

Mientras el conocimiento de la vegetación

es bastante completa, la información relativa a

fauna, y en particular a insectos, es muy limi-

tada. Al respecto, los escasos estudios se re-

fieren a los icneumónidos (Hymenoptera)

(Jerez et al., 1977) y coleópteros epígeos (So-

lervicens, 1973) del bosque de Quintero.

Por otra parte, las comunidades de pantano

están siendo afectadas por una serie de fac-

tores que tienden a su gradual disminución.

En forma natural la aridez del Holoceno

estaría restringiendo la extensión de estas for-

maciones, pero, tal vez, las acciones más im-

portantes son derivadas de la actividad

humana que significa corte de leña, drenaje de

suelos, ramoneo del ganado, incendios.

De acuerdo a estos antecedentes se plantea

la necesidad de investigar la entomofauna de

dichos bosques con el propósito de conocer su

composición de insectos en todo el rango de

su distribución y determinar la variación lati-

tudinal que pueda experimentar.

METODOLOGIA

Considerando la amplitud del muestreo in-

volucrado en el estudio se seleccionó la ento-

mofauna de follaje para ser investigada por la

mayor facilidad de colecta. Para este efecto se

empleó el método de sacudido de follaje el

cual fue aplicado simultáneamente por dos

colectores por un período total aproximado de

5 horas en cada bosque. Los bosques muestra-

dos son los mismos seleccionados en el estu-

dio florístico, salvo en la zona de Valdivia.

En total se prospectaron 31 bosques, en

período de primavera y verano en 1991 -

1992, cuyo detalle aparece en el Anexo 1. Los

insectos obtenidos fueron preparados,

etiquetados y posteriormente sometidos a estu-

dio taxonómico para su determinación.

Para la zona del Norte Chico y V región se

introdujo en el análisis los datos de seis

bosques que habían sido prospectados en 1989

con la misma metodología, con el propósito de

tener una base de referencia de los niveles de

similitud.

El análisis de la fauna de insectos consideró

estimadores de presencia, abundancia y simili-

tud. Para efecto de los cálculos de presencia y

promedios de individuos y especies por

bosque no se consideraron los muestreos del

año 1989 en los bosques del Norte Chico y V

región para evitar distorsiones. Con el objeto

de procesar la información relativa a la simili-

tud taxonómica se empleó el programa

NTSYS, sin embargo, la gran cantidad de da-

tos superó la capacidad del programa por lo

que fué necesario hacer dos conjuntos.

La identificación del material reunido se

efectuó por comparación con especímenes

identificados por especialistas, conservados en

las colecciones del Museo Nacional de Histo-

ria Natural (Sección Entomología) y de la Uni-

versidad Metropolitana de Ciencias de la

Educación (Instituto de Entomología). En el

caso de algunos grupos se utilizaron claves

disponibles (Benedetto, 1974; Burckhardt,

1987a-b, 1988; Jerez, 1991; Kumar, 1974;

Lóbl, 1983; Monrós, 1949; Snelling y Hunt,

1976; Werner, 1975), descripciones (Jerez y

Berti 1987; Linnavuori y De Long, 1978) y el

apoyo directo de especialistas.

Se descartó algunos grupos de insectos que

por sus modalidades de vida y forma de des-

plazamiento no son colectados adecuadamente

con el método del paraguas y por lo tanto su

representatividad en los muestreos es distor-

sionada (Odonata, Blattodea, Lepidoptera,

Diptera e Hymenoptera salvo Formicidae).

RESULTADOS Y DISCUSION

Composición taxonómica. Los grupos más

importantes en la entomofauna de follaje lo

constituyen los hemípteros y coleópteros

(Tabla 1) que representan 92,19 % del total.

La abundancia relativa de Hemiptera es simi-

lar a la encontrada por Solervicens y Elgueta

(1989) en matorral xerófilo del Norte Chico

(19,17 %) y algo más baja que la obtenida en

la Reserva Nacional. Río Clarillo por Soler-

vicens et al. (1991) en bosque esclerófilo y

matorral xerófilo (34,37 %), en ambos casos

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile 137

con el mismo método de colecta empleado en

este estudio.

TABLA 1

GRUPOS TAXONOMICOS REPRESENTADOS EN

LOS BOSQUES

ORDENES FAMILIA GENEROS ESPECIES

N2 Ne AN %

Ephemeroptera -.- -.- 4 0,61

Plecoptera 2 4 0,61

Orthoptera 6 11 12 1,83

Phasmatodea 1 1 0,15

Hemiptera 30 CIMA 0138

Melagoptera 1 1 1 0,15

Neuroptera 0) 4 7) 1,07

Coleoptera 51 242 470 71,86

Trichoptera 4 2 8 1.22

Hymenoptera 1 8 14 2.14

TOTAL 98 SIMON

En dichas referencias los coleópteros

tienen abundancia semejante (58,20 % y 55,59

%, respectivamente), que es notoriamente in-

ferior a la lograda en bosques de pantano en

donde constituyen cerca de los 3/4 de la fauna

considerada.

Sin embargo, en cuanto a su composición

global, la fauna de follaje de bosques de pan-

tano sigue las tendencias mostradas en otros

ambientes por la predominancia de Hemiptera

y Coleoptera.

Riqueza de especies y abundancia. Aunque

no se tiene puntos de referencia de estudios

similares, resulta importante destacar el gran

número de especies (654) detectadas en los

bosques de pantano; a juzgar por el porcentaje

de ellas que no pudo ser determinado, es

seguro que varias no han sido descritas aún

(Anexo 2). En el caso de Coleoptera los taxa

obtenidos representan el 12,6 % de las espe-

cies y más del 21% de los géneros de este

grupo conocidos en Chile, de acuerdo a los da-

tos entregados por Elgueta y Arriagada

(1989).

Es probable que la homogeneidad ambiental

ofrecida por este tipo de bosques, caracteri-

zados por especies siempre verdes, de gran

cobertura, que se desarrollan en lugares que

reciben un aporte constante de agua con lo que

aseguran condiciones bastante estables de tem-

peratura y humedad adecuada y persistente,

actúe como un factor de concentración de

fauna que favorezca su diversidad.

En cuanto a la riqueza de especies por

bosque (Tabla 2) se revela un aumento consi-

derable en la zona central del área muestreada,

cuyo limite norte es definido por el elevado

número de especies observado en la localidad

de Tanumé, valores que se mantienen en los

bosques de la región del Maule. La parte

meridional del área, sin embargo, resulta

difícil de establecer por falta de un quiebre

destacado de las cifras. Apoyándose en las

agrupaciones establecidas por los fenogramas

podría reconocerse un límite sur en la provin-

cia de Malleco (fenograma de coleópteros,

Fig. 1) que incluiría 14 bosques, o en la de Li-

nares (fenograma de otras especies, Fig. 2),

que incluiría 9 bosques. En ambos casos se

obtienen promedios de 95 y 97 especies por

bosque, respectivamente.

Los bosques del Norte Chico y V región

tienen un promedio de 63 especies y los del

sur 69 o 77, según la agrupación que se em-

plee.

El considerable número de especies de la

zona intermedia se relaciona con el carácter

transicional del área, particularmente de la

región del Maule, que recibe elementos de tipo

valdiviano y esclerófila.

La menor riqueza de especies en el sector

norte podría entenderse por el grado de ais-

lamiento de los bosques, inmersos general-

mente en formaciones de tipo xerófilo, cuyos

elementos tendrían mayores dificultades para

integrarse a los ambientes húmedos de pan-

tano.

La misma situación se encuentra en relación

con la abundancia: en la zona intermedia se

detectó un promedio de 343 o 333 individuos

por bosque, según el número de rodales con-

siderados. Estos valores disminuyen a 262 ó

300 en el sur y a 257 en el norte.

Estos resultados coinciden con los del

análisis florístico que reconoce una estructura

más simple hacia los extremos de la dis-

tribución de la formación de bosques de pan-

tano (J. San Martín, comunicación personal).

138 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

TABLA 2

NUMERO DE INDIVIDUOS Y DE ESPECIES POR

BOSQUES

BOSQUES N? IND. N? ESP.

EL BATO 342 79

EL BATO 89 289 50

EL ÑAGUE 253 57

EL ÑAGUE 89 197 54

AGUA AMARILLA 232 71

QUEREO 301 57

QUEREO 89 305 55

PALO COLORADO 273 72

PALO COLORADO 89 274 64

LOS CRISTALES 128 43

LA CANELA 435 92

QUINTERO 106 37

QUINTERO 89 150 41

SAN JERONIMO 241 58

SAN JERONIMO 89 88 43

TANUME 421 104

PIEDRAS NEGRAS 406 101

EL RADAL 283 96

LA VEGA (AGUA BUENA) 295 93

CANELILLOS (CARRIZAL) 359 111

RARI 292 89

PELLUHUE 409 105

CANELILLOS (CHOVELLEN) 318 100

LA VEGA (PARRAL) 213 76

BULNES 372 81

LA FLORIDA 432 97

COLLICO NORTE 387 110

SAN JOSE DE COLICO 391 76

PELECO 230 70

MININCO 331 95

LOS ALAMOS 279 73

QUEPE 285 55

LOS ÑIRRES 330 74

KM 737 PANAM. SUR 362 83

SALTO DE AGUA 181 64

LINGUENTO 132 59

CHAUQUEN 183 70

TOTAL 10505

Constancia y abundancia. Sólo 27 especies

son constantes en los bosques (presencia de

más de 50%) y algunas de ellas también son

las más abundantes (Tabla 3) por lo que repre-

sentan el núcleo básico de insectos de estas

formaciones. Una situación similar reveló el

estudio de la vegetación donde 4 especies son

el grupo característico en tanto que el 94% de

las plantas no forman parte de la estructura

florística típica (J. San Martín, comunicación

personal).

Como elementos accesorios hay 76 especies

(presencia entre 25 - 50%) y las restantes 551

son accidentales (presencia entre 0-25%). Del

conjunto de especies accidentales 257 tienen

un solo registro.

Es necesario tener presente que el grado de

presencia en los bosques no tiene una relación

directa con el posible caracter exclusivo de las

especies de insectos. De hecho, la informa-

ción disponible, que se revisará más adelante,

señala que muchos elementos constantes son

generalistas ya que también se encuentran en

otros tipos de formaciones vegetacionales.

Similitud taxonómica

Los análisis de similitud taxonómica entre los

bosques se expresan en dos fenogramas, uno

de los cuales contiene la información de 397

especies de coleópteros (Fig. 1) y el otro de

las restantes especies de este orden y los de-

mas grupos de insectos considerados en el es-

tudio, que suman 257 taxa (Fig. 2)

En ambos casos se observa una separación

entre los bosques del Norte Chico y V región

con respecto a los del sur. Los valores de

similitud entre estos dos grupos son bajos

(cerca de 10%), lo que indica una diferente

composición entomofaunística entre ellos; sus

nexos se establecen a través de las especies

constantes y abundantes de amplia dis-

tribución (Tabla 3). La división coincide

aproximadamente con el cambio climático de

zonas de tendencia mediterránea áridas y

semiáridas, con respecto de áreas catalogadas

como subhúmedas a perhúmedas según Di

Castri y Hajek (1976).

Cuando se considera la fauna de coleóp-

teros, los bosques del Norte Chico y V región,

que fueron muestreados en 1989 y 1991, tien-

den a aparecer con dichas recolecciones aso-

ciadas entre sí, salvo el casa de Palo Colorado

y San Jerónimo. Los niveles de similitud de

estos pares oscilan en el caso de El Bato y

Quintero en torno a un 30 %, en tanto que El

Ñague y Quereo presentan 43 y 52 % respecti-

vamente, indicando mayor uniformidad tem-

poral de su composición específica de

coleópteros.

Las diferencias observadas pueden estar re-

lacionadas con limitaciones del muestreo y

con las condiciones de sequía imperantes en

1989 que parecen haber influído en el

abastecimiento de agua freática de los

bosques, el que podría haberse reducido en

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile 139

forma importante en alguno de ellos, situación

que se pudo constatar en San Jerónimo, afec-

tando a sus poblaciones de insectos.

TABLA 3

ESPECIES CONSTANTES (1) Y/O ABUNDANTES (2)

Constancia % Abundancia %

Scirtidae sp 5 87,0 2,61

Cybocephalus chiliensis 74,1 0,68

Neopsilorhinus valdivianus 70,9 1,78

Melizoderes osborni 67,7 0,89

Acrophyma impluviata 67,7 1,05

Callideriphus laetus 67,7 0,43

Pseudomyrmex lynceus 67,7 0,42

Bergidia polychroma 64,5 0,76

Scirtidae sp 1 64,5 1,13

Chlamisus apricarius 64,5 1578

Psathyrocerus pallipes 64,5 1,61

Lasiophanes hoffmani 64,5 0,91

Scirtidae sp 7 61,2 0,87

Deromecus filicornis 61,2 1,87

Silviella nudatum 58,0 0,63

Eurymetopum eburneocinctum 58,0 1,61

Orchesia sp 1 58,0 0,68

Limnoperla jaffueli 54,8 IS

Neonemura sp. 54,8 0,62

Aemalodera testacea 54,8 0,64

Myrmelachista mayri 54,8 0,58

Melizoderes variegatus 54,8 0,78

Trioza sp 2 51,6 0,57

Scirtidae sp 4 MG 177,2

Solervicensia ovata 51,6 0,75

Cranoryssus variegatus 51,6 0,57

Myrmelachista hoffmani 51,6 0,57

Notophorina stigmaticalis 45,1 0,99

Scirtidae sp 2 45.1 0,97

(1) Constantes: Presente en 50% o más de los bosques

(2) Abundantes: Con más de 100 ejemplares (0,95%

Estos bosques del Norte Chico manifiestan

una tendencia de agrupamiento entre los del

interior (El Bato, Los Cristales, La Canela) y

los de la costa, lo que seguramente está re-

lacionado con las diferencias climáticas

propias de ambos sectores.

Es interesante destacar que los coeficientes

de similitud más altos corresponden a bosques

geograficamente próximos (El Ñague, Agua

Amarilla, Quereo). El bosque de Quintero

aparece muy aislado dentro de este conjunto

manifestando así el fuerte grado de interven-

ción antrópica de que ha sido objeto, el que ha

significado una notable pauperización de su

fauna (Tabla 2).

La fauna de coleópteros de los bosques del

sur se separa en dos conjuntos que correspon-

den a regiones geográficas bien delimitadas.

El más septentrional comprende el área entre

la VI y VIII regiones, sin comprometer la zona

costera de Arauco; el más austral comprende

la zona de Arauco, Cautín y Valdivia. El

fenograma de otros insectos también segrega

dos conjuntos en la fauna de los bosques del

sur, pero la separación entre ellos se establece

en el borde meridional de la región del Maule.

En este caso el área comprendida al norte de

este limite corresponde con la zona mediterrá-

nea subhúmeda de Di Castri y Hajek (op. cit.)

En ambos fenogramas los niveles de aso-

ciación entre los dos conjuntos de bosques del

sur son bajos (cerca del 15 %) denotando

cierta diferenciación de la fauna. Cualquiera

sea la ubicación del límite, los dos fenogramas

coinciden en reconocer mayor afinidad entre

bosques de la zona costera del Maule, abar-

cando al menos los presentes en Tanumé, Pie-

dras Negras, La Vega (Agua Buena), Rari,

Canelillos (Carrizal) y Canelillos (Chovellén).

Otra agrupación presente en ambos feno-

gramas es la de La Florida, Bulnes y Collico

Norte, todos rodales próximos entre sí, a los

que se agrega Mininco en el caso de coleóp-

teros. También hay coincidencia en los dos

análisis en separar los bosques de la región

valdiviana, al menos los de Km 737 Panameri-

cana Sur, Salto de Agua y Linguento, mar-

cando una vez más la similitud entre

formaciones geográficamente próximas. Es

interesante notar que estos últimos bosques se

ubican en el ámbito de la zona climática

oceánica de Di Castri y Hajek (op. cit.).

En general no se observa una tendencia de-

finida de asociación de los bosques del llano

central, que pueden aparecer relacionados en-

tre si o con los de la zona costera.

Es evidente el agrupamiento de los bosques

de acuerdo a una secuencia latitudinal que

parece corresponder con las divisiones bio-

climáticas del territorio. De este modo es

posible distinguir al menos los bosques del

Norte Chico y V región, los del Maule y los de

la región Valdiviana, como unidades bien dife-

renciadas. Esto implicaría un reemplazo lati-

tudinal de especies en concordancia con las

condiciones climáticas regionales y las forma-

ciones vegetacionales correspondientes.

140 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Similitud biocenótica

El análisis biocenótico según Winer, efectuado

para las mismas agrupaciones de insectos del

estudio de similitud taxónomica, revela valo-

res muy bajos de asociación entre los bosques

(Figuras 3 y 4), indicando gran heterogeneidad

en la estructura de las comunidades de insec-

tos de estas formaciones. Esto es cierto, in-

cluso, entre los muestreos de 1989 y 1991 de

un mismo bosque (Fig.4, Palo Colorado, Quin-

tero, Quereo, El Bato) los cuales aparecen aso-

ciados entre sí. Esta baja similitud de la

organización comunitaria de un mismo bosque

en dos años distintos implica, como se ha

señalado, limitaciones del muestreo a variacio-

nes en la estructura poblacional o ambos fac-

tores a la vez. Los rodales estudiados solo en

1991, por su parte, estarían afectados por el

sistema de muestreo, por el desfasamiento

temporal de las recolecciones que se iniciaron

en el norte en octubre y terminaron en el sur

en enero y por su diferente estructura vege-

tacional . La influencia de este último factor,

sin embargo, es relativa, pues si el análisis fi-

tosociológico indica gran heterogeneidad, la

composición básica típica de los bosques está

dada por 5 especies frecuentes y con alta

cobertura (3 mirtáceas, canelo y una liana),

que determinan la fisonomía característica de

la formación, con pocas modificaciones a lo

largo de su distribución (J. San Martín, comu-

nicación personal).

Es interesante destacar que, así como en el

análisis de similitud taxonómica, se observa

una separación entre los bosques del norte y

los del sur (salvo algunas excepciones en que

bosques septentrionales se asocian biocenóti-

camente a los australes) (Figs. 3 y 4). La posi-

ción de San Jerónimo entre los bosques del sur

puede atribuirse a su ubicación geográfica in-

termedia que le permite compartir elementos.

Esto no es válido, sin embargo, para Los Cris-

tales, El Bato y Quereo, también inmersos en-

tre bosques meridionales.

Las subagrupaciones de los bosques del sur

reconocidos por análisis taxonómico no apare-

cen claramente estructuradas pero, con algu-

nas variaciones, tienden a conservarse,

particularmente para los insectos considerados

en el fenograma de la Figura 4.

Caracterización de la entomofauna de los

conjuntos de bosques

Los fenogramas han permitido reconocer la

existencia de conjuntos de bosques con mayo-

res niveles de similitud taxonómica entre sí.

Esto implica que dichos bosques comparten

ciertos taxa que son propios de ellos o al

menos son más frecuentes en ellos.

De este modo, algunas especies que global-

mente aparecen como accesorias pueden ser

constantes en alguna de los conjuntos y ser

menos frecuentes o simplemente estar ausen-

tes en los restantes. Esta situación pone en

evidencia el reemplazo latitudinal de especies

a lo largo del gradiente estudiado.

Sobre esta base se ha hecho una caracteri-

zación de la entomofauna de las agrupaciones

de bosques.

Agrupación Norte Chico y V región (9

bosques)

Cinco especies constantes y 9 accesorias

aparecen en forma exclusiva en estos bosques

(Tabla 4); entre ellas cabe destacar a Neop-

silorhinus variegatus y Microzogus sp. por su

mayor frecuencia. La presencia de Plas-

tonothus chalybaeus así como la especie ac-

cesoria Lithraeus leguminarius revela la

influencia de elementos propios de la vege-

tación esclerófila o xérica. Elater abdominalis

parece característica de los bosques de este

sector.

Vínculos con la subregión del Maule se es-

tablecen a través de la presencia compartida

de elementos constantes en ambos sectores:

Neomagdalis unicolor y Notophorina stig-

maticalis, o constantes en el norte y accesorios

en el Maule: Microcleptes araneus y Dasytes

sp 1.

Otras especies constantes en el sector norte

aparecen accidentales o accesorias más al sur:

Achilidae sp 1, Callidula nigrofasciata, Ci-

cadellidae sp 5, Alchisme rubrocostata,

Hyalodes sp, Scirtidae sp 8, Hyponotum col-

laris, Lithraeus elegans, lo que podría indicar

un gradiente distribucional con óptimo en el

sector analizado.

Agrupación Sur (22 bosques)

Diez especies constantes y 40 accesorias

pueden ser mencionadas como marcadoras,

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile 141

por su presencia exclusiva en estos bosques

(Tabla 5). Algunas de ellas son elementos

habituales de la selva valdiviana: Ericmodes

sylvaticus, Dinocentrus asperatus, Tricho-

phthalmus miltomerus, Aegorhinus supercilio-

sus, A. nodipennis, Sericoides viridis,

Aconopterus cristatipennis, Protosialis chilen-

sis. Sin embargo, Omoides flavipes, Eury-

lomata picturata y Mylassa rubronotata han

sido detectadas en matorral xerófilo y bosque

en la precordillera de Santiago y zona costera

del Norte Chico (Solervicens y Elgueta, 1989;

Solervicens et al., 1991; Solervicens y Gon-

zález 1993).

TABLA 4.

ESPECIES CONSTANTES Y ACCESORIAS

EXLUSIVAS DE LA AGRUPACIÓN NORTE.

N?* de bosques % de presencia

Constante

Neopsilorhinus variegatus 9 100,0

Microzogus sp. 6 66,6

Plastonothus chalybaeus 5 39)

Elater abdominalis 5 DD)

Epuraeopsis maculipennis 5 DD

Accesorias

Geniocremnus villosus 4 44 4

Acalles cinerascens 4 44,4

Lithraeus leguminarius 4 44,4

Cicadellidae sp 8 4 44 4

Phytocoris sp 4 4 44 4

Phytocoris irroratus 3 SS

Anacantha sulcicollis 3 3)

Xyletinus sp 5 3 33,3

Anobiopsis sp 3 7)

Asociación con ciertas plantas de los

bosques presentan especies de Minurus con

Myrtaceae (Voss, 1951), Berberidicola ater

con Berberis y Trichophthalmus miltomerus

con Blechnum.

Otra conjunto de especies constantes o

accesorias parecen características de la agru-

pación sur pero están presentes en el bosque

de San Jerónimo, el más austral de la agru-

pación norte, donde tienen, aparentemente, su

límite septentrional de distribución: Orchesia

sp 1, Dasytes haemarrhoidalis, Amecocerus

subaeneus, Stictospilus darwini, Halticella

atrocyanea (asociada a Fuchsia magellanica

según Jerez, 1988), Neopsilorhinus collaris,

Coccidulini sp 1 y Planois bimaculatus. Esta

situación puede ser testigo de condiciones

climáticas pasadas, caracterizadas por mayor

humedad, que habrían permitido la ampliación

del rango de distribución de especies aus-

trales.

TABLA 5

ESPECIES CONSTANTES Y ACCESORIAS EXCLUSI-

VAS DE LA AGRUPACIÓN SUR

N? de bosques % de presencia

Constante

Neopsilorhinus valdivianus 22 100,0

Aemalodera testacea 17) INE.

Scirtidae sp 4 16 231)

Ericmodes sylvaticus 15 68,1

Scirtidae sp 2 14 63,6

Pomachilius sp 13 59,1

Mordella erythrura 13 59,1

Altica janthina 11 50,0

Cicadellidae sp 9 11 50,0

Cicadellidae sp 14 11 50,0

Accesorias

Perilopsis flava 10 45,4

Berberidicola ater 10 45,4

Omoides flavipes 9 40,9

Dinocentrus asperatus 9 40,9

Protosialis chilensis 9 40,9

Tettigoniidae sp 2 9 40,9

Stenomela pallida 9 40,9

Trichophthalmus miltomerus 9 40,9

Cosmophyllum alivaceum 8 36,3

Miridae sp 7 8 36,3

Miridae sp 3 8 36,3

Miridae sp 2 8 36,3

Miridae sp 1 8 36,3

Tuxenella aff. bifasciata 8 36,3

Eurylomata picturata 8 36,3

Staphylinidae sp 6 8 36,3

Brachysternus viridis 8 36,3

Dasytes sp 2 8 36,3

Cixiidae sp 2 8 36,3

Aegorhinus superciliosus 8 36,3

Aegorhinus nodipennis 7 31,8

Metallactus ochripennis 7 31,8

Comperocoris roehneri 7 31,8

Phytocoris sp 1 7 31,8

Cercapidae sp 1 31,8

Aemalodera limbata 7 31,8

Sericoides viridis 7) 31,8

Cicadellidae sp 19 7 31,8

Protopsilapha pyrrhoptera 6 2 EZ

Minurus testaceus 6 22/02)

Cicadellidae sp 1 6 2)

Cicadellidae sp 4 6 22

Phytocoris rubrescens 6 EZ

Flatidae sp 6 2D

Deromecus grisescens 6 DE

Chiliotis formosus 6 DJ

Mordella rufoaxilaris 6 2D

Heliofugus sp 2 6 2

Aconopterus cristatipennis 6 2D

Mylassa rubronotata 6 DA

142 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Dentro de la agrupación sur es posible dis-

tinguir sub-agrupaciones, las cuales a su vez,

en el contexto del tipo vegetacional analizado,

poseen elementos característicos; estas sub-

agrupaciones, como se evidencia en los

fenogramas, corresponden a bosques del área

del Maule (O”Higgins a Maule), una zona cen-

tro-sur no claramente definida (Ñuble a

Malleco) y el área valdiviana.

Sub-agrupación del Maule (9 bosques)

Con 3 especies constantes y 9 accesorias pre-

sentes en forma exclusiva en esta área (Tabla

6). Sin embargo, de ellas, Diontolobus puncti-

pennis y Anthicus melanurus tienen registros

en la precordillera de Santiago (Solervicens y

González, 1993) y Tillomorpha miymicaria en

zonas más australes (Cerda, 1986).

TABLA 6

ESPECIES CONSTANTES Y ACCESORIAS EXCLUSI-

VAS DE LA SUB-REGIÓN DEL MAULE

N? de bosques % de presencia

Constante

Chiliotis formosus 6 66,6

Cicadellidae sp 1 6 66,6

Achilidae sp 2 5 55,5

Deromecus cervinus S) ID)

Dictyneis asperatus 5 1D

Accesorias

Diontolobus punctipennis 4 44,4

Dasytes binotatus 4 44,4

Nemacerus incertus 4 44,4

Rhaphidophoridae sp 3 333

Notophorina areolata 5) 33,3

Chiliotis sp 3 383

Anthicus melanurus 3 208)

Tillomorpha miyrmicaria 3 33%

Omoides humeralis azarae 3 353)

La subregión se vincula nuevamente con la

agrupación norte a través de una especie Cons-

tante, Ptinus sp 2, y dos accesorias: Cicadelli-

dae sp 10 y Gayus elegans, las cuales tienen

presencia accidental en dicha area. Las re-

laciones con la zona sur adyacente son más

numerosas y se establecen a través de las espe-

cies constantes: Dasytes sp 2, Cixiidae sp 2,

Heliofugus sp 2 y Stenomela pallida y las ac-

cesorias Eucalus tessellatus, Cicadellidae sp

19, Homalotrichus striatus, Deromecus grises-

cens, Eurymetopum fulvipes (que se extiende

hasta Magallanes según Solervicens 1986),

Hyperaspis germaini, Metallactus ochripen-

nis, Psathyrocerus fulvipes y Aegorhinus sp.

Dentro de este conjunto cabe destacar a

Stenomela pallida, especie que de acuerdo a

Blanchard (1851, como Apocinocera her-

bacea) se encuentra asociada a Myrtaceae,

algo comprobado en este estudio, la cual junto

a Aegorhinus sp.constituyen casos bien defini-

dos de endemismo de la zona del Maule y

Centro-Sur.

Subagrupación Centro - Sur (bosques entre

Bulnes y Ercilla)

Los fenogramas no separan claramente esta

subagrupación cuyos bosques pueden presen-

tar asociación con los del Maule o los valdi-

vianos. De hecho su caracterización es díficil

por la ausencia de elementos constantes exclu-

sivos; más bien parece tratarse de una zona in-

termedia entre los sectores norte y sur

adyacentes.

Subagrupación valdiviana (6 bosques de

Cautín y Valdivia).

Se caracteriza por 8 especies constantes y 8

accesorias exclusivas (Tabla 7).

TABLA 7

ESPECIES CONSTANTES Y ACCESORIAS EXCLUSI-

VAS DE LA SUBAGRUPACIÓN VALDIVIANA

N* de bosques % de presencia

Constante

Phytocoris rubrescens 6 100,0

Cixiidae sp 3 4 66,6

Tuxenella similaris 3 50,0

Aemalodera dentomaculata 3) 50,0

Pyractonema sp 4 3 50,0

Hyponotum grandicolle S 50,0

Mordella fumosa 3 50,0

Lasiophanes picinus 3 50,0

Accesorias

Cicadellidae sp 17 2) 33,3

Prepops circummaculata 2 33,3

Stenaparedra sp 2 2 33,3

Hemerobius sp 3 2 33,3

Staphylinidae sp 5 2 33,3

Scirtidae sp 6 2 33,3

Orchesia sp 2 2 33,3

Hydroptilidae sp 2 2 33,3

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile 143

La subagrupación se vincula ampliamente

con el resto de la agrupación sur a través de

numerosas especies constantes en la zona

valdiviana: Cosmophyllum olivaceum, Tettigo-

niidae sp 2, Cicadellidae spp 4, 9, 13 y 14,

Nabis faminet, Tuxenella aff. bifasciata, Miri-

dae spp 2 y 3, Comperocoris roehneri, Ae-

malodera limbata, Staphylinidae sp6,

Scirtidae sp2, Sericoides viridis, Pomachilius

deromecoides, Pomachilius sp, Perilopsis

flava, Ericmodes sylvaticus, Mordella

erythrura, Mordella holosericea, Mordella ab-

breviata y Altica janthina y un conjunto simi-

lar de elementos que tienen en ella presencia

accesoria: Cercopidae sp, Phytocoris marmo-

ratus, Phytocoris spl1, Chileaia uretat, Miri-

dae spl y 7, Protosialis chilensis, Aemalodera

testacea, Dromius maculipennis, Anaspasis

parallela, Hyponotum kraussei, Dysmorpho-

cerus sp7, Mordella andina, Chenoderus tes-

taceus, Trichophthalmus miltomerus, Minurus

testaceus, Aegorhinus superciliosus, Omoides

validus y 2 especies de Limnephilidae.

Relaciones insecto - bosque

Considerando la génesis de los bosques de

pantano, determinada por condiciones edáficas

especiales y el eventual establecimiento de

vegetales cuyas semillas son dispersadas por

aves, y teniendo en cuenta la distribución de

las especies de insectos encontradas, con

cierto reemplazo a lo largo del gradiente lati-

tudinal estudiado, no es posible hablar de una

entomofauna exclusiva a ellos.

Sin embargo, algunas especies aparecen

muy ligadas a estas formaciones por su de-

pendencia con ciertas plantas típicas de la

comunidad. En este sentido se cita la relación

de representantes de Neopsilorhinus con Myr-

taceae (Kuschel, 1952; Philippi, 1887), Crano-

ryssus variegatus con flores de mirtáceas

(Germain, 1892), Notophorina stigmaticalis

con Luma apiculata (Burckhardt, 1986,

1987b); esta última especie fue encontrada en

este estudio asociada a Luma chequen. Para el

caso de Notophorina se piensa que los hospe-

deros primitivos habrían sido especies de Myr-

taceae (Burckhardt, 1987b); esta condición se

presenta, además, en otra de las especies en-

contradas, N. eugeniae (Kieffer y Herbst,

1911)

La misma relación con mirtáceas ha sido re-

conocida para Minurus (Voss, 1951) y para

Holopterus annulicornis la cual se desarrolla

en diversas especies de dicha familia (Barriga

et al., 1993). Un caso especial lo constituye

Stenomela pallida, ya citado; los autores la

han colectado en abundancia en ambientes de

bosque de pantano en la región del Maule y

hasta Ercilla, área en la cual parece endémica.

Una situación similar se constató para Ae-

gorhinus sp. en cuanto a asociación con

mirtáceas, distribución y endemismo en la

misma área; sin embargo, también se obtuvo

un ejemplar en bosque de ruil (VNothofagus

alessandrii) lo que hace dudar de su especifi-

cidad.

Como las especies de mirtáceas se dis-

tribuyen también en ambientes distintos al

bosque de pantano, como áreas ribereñas de

cursos del agua, es muy probable que sus in-

sectos asociados también estén presentes en

dichos ambientes. La experiencia de terreno

de los autores ha reconocido esta situación

para especies de Neopsilorhinus.

En asociación con otra tipo de plantas,

Jerez (1988) cita Halticella atrocyanea de-

sarrollándose en Fuchsia magellanica y, como

se ha señalado, Kuschel (1952) menciona a

Omoides en relación con Azara, ambas plantas

presentes pero no exclusivas de bosque de

pantano.

Otro conjunto de insectos muy diversifi-

cado y constante lo constituyen los que re-

quieren de ambientes acuáticos para su

desarrollo (Ephemeroptera, Plecoptera, Siali-

dae, Scirtidae y Trichoptera). Si bien algunos

de ellos son comunes y abundantes en estas

formaciones (Plecoptera y Scirtidae), deben

encontrarse también en otros lugares diferen-

tes que cumplan con los requerimientos de

agua necesarios.

Se ha señalado que la mayoría de las espe-

cies presentes en los bosques de pantano no

tendrían asociación estrecha con ellos, pudien-

do encontrarse en otras formaciones. La infor-

mación disponible permite confirmar esta

situación para Callideriphus laetus, muy

polífaga, teniendo desarrollo en diversas plan-

tas del bosque esclerófilo y valdiviano (Barri-

ga et al., 1993); Neohebestola humeralis, que

vive en Aristotelia chilensis, Baccharis

144 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

linearis, Sophora macrocarpa, entre otras

(Barriga et al., 1993); todas las especies de

cléridos que pueden habitar, matorrales

xerófilos y esclerófilos (Epiclines, algunos

Eurymetopum, Silviella, Natalis, Notocyma-

todera, Corinthiscus, Cregya y Solervicensia)

y bosques con Nothofagus (Silviella, Euryme-

tomorphon, varios Eurymetopum: Solervicens,

1980, 1986, 1991, 1992a). Sin embargo, algu-

nas de estas especies, seguramente por su de-

pendencia de la humedad, en la zona norte se

encuentran muy asociadas a los bosques de

pantano (Eurymetopum eburneocinctum y

Silviella nudatum: Solervicens, 1987, 1992b),

pero hacia el sur pierden esta especificidad.

Otro conjunto de especies en esta situación:

Cybocephalus chiliensis, Psathyrocerus palli-

pes, Myrmelachista hoffmani y Pseudomyrmex

lynceus, entre las constantes (Tabla 3) y Al-

chisme rubrocostata, Eurylomata picturata,

Callidula nigrofasciata, Byrrhodes bimacula-

tus, Stictospilus darwini, Eriopis connexa,

Adalia deficiens, A. angulifera, Melano-

phthalma pilosa, Microcleptes araneus,

Lithraeus elegans, Pachybrachis gayi,

Omoides flavipes y Neomagdalis unicolor, en-

tre las accesorias, han sido encontradas tam-

bién en matorral xerófilo y bosque esclerófilo

(Solervicens y Elgueta, 1989; Solervicens et

al., 1991; Solervicens y González, 1993; Mon-

rós, 1949). Para Pseudomyrmex lynceus,

Snelling y Hunt (1976) señalan que es una

especie arborícola ampliamente distribuida.

Finalmente, un número importante de insec-

tos no son propios de las formaciones de pan-

tano ya que están asociados a plantas típicas

de otros ambientes o viven normalmente en si-

tuaciones diferentes y solo ocurren accidental-

mente en los bosques estudiados. En este caso

se encuentran especies de Tenebrionidae

(Peña, 1966), Formicidae (Snelling y Hunt,

1976), Biturritidae (Linnavuori y De Long,

1978), Psylloidea (Burckhardt, 1986, 1987a-b,

1988), Bruchidae (Avendaño y Sáiz, 1978;

Barriga, 1990, Bridwell, 1952; Elgueta Arria-

gada, 1989) Chrysomelidae (Jerez, 1991, Jerez

y Berti, 1987; Zapata, 1970), Tingidae y Cur-

culionidae (Elgueta, 1988, 1993).

CONCLUSIONES

La entomofauna de las bosques de pantano

representa un conjunto muy diversificado de

especies con predominancia de hemípteros y

coleópteros.

Debido al caracter aislado de los bosques y

a su origen a partir de una sucesión vege-

tacional, se estima que su poblamiento animal

se habría producido a base de la fauna local o

por desplazamiento de especies entre bosques

según su capacidad de dispersión. De acuerdo

a esto, la mayoría de los constituyentes serían

generalistas que también habitan otras forma-

ciones vegetacionales. Se reconoce, sin em-

bargo, la presencia de un conjunto de especies

calificadas como marcadoras por su tendencia

a presentarse preferentemente en esta forma-

ción ya que tienen asociación con especies de

mirtáceas. Finalmente, no se excluye la posi-

bilidad de que algunas especies tengan un vín-

culo más estrecho con la formación

vegetacional, lo que podrá ser aclarado con

mayores estudios taxonómicos y registros.

Se constata una modificación latitudinal de

la entomofauna que permite distinguir bosques

del Norte Chico y V región, bosques de la

zona del Maule y bosques de la zona de Valdi-

via, los cuales corresponden con las grandes

divisiones bioclimáticas del territorio, apoyan-

do la idea de la influencia del factor local en

su cCOMPosiciÓón.

Los bosques de la zona del Maule se desta-

can por su mayor riqueza de especies y abun-

dancia de individuos lo que parece explicarse

por su carácter transicional que les permitiría

contar con elementos esclerófilos y valdivia-

nos, además de elementos diferenciados a

nivel local. Por su parte, los menores valores

de estos parámetros en los bosques del Norte

Chico y V región se explicarían por su ais-

lamiento en una zona caracterizada por comu-

nidades xerófilas que harían menos aportes de

fauna.

La homogeneidad vegetacional y micro-

climática de los bosques de pantano y su esta- |

bilidad temporal, crean condiciones óptimas

para el desarrollo de los insectos actuando,

aparentemente, como concentradores de fauna

proveniente de comunidades adyacentes. De

esto se desprende la necesidad de proteger

estas formaciones por su posible carácter de

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile 145

reservorios en los cuales puede refugiarse y

permanecer gran parte de la biota local

amenazada por la modificación antrópica. Su

ubicación en general en el fondo de quebradas

y zonas bajas los excluye del reemplazo por

bosques artificiales pero los deja expuestos, en

cambio, al raleo, drenaje de suelos y actividad

del ganado.

La conservación de estas comunidades re-

sulta más urgente en la zona del Maule por el

reemplazo acelerado del bosque nativo y por

la presencia de especies endémicas de este

sector.

AGRADECIMIENTOS

Al Fondo Nacional de Investigación Científica

y Tecnológica (FONDECYT) por el apoyo

económico otorgado a través del Proyecto 91 -

186 y el Proyecto 89 - 110 que permitió ob-

tener la información de los bosques del norte

del año 1989. Un especial reconocimiento a la

Profesora Patricia Estrada por su valiosa y

desinteresada colaboración en el proce-

samiento computacional de los datos.

Agradecimiento al Sr. Andrés Alviña por la

confección de las figuras.

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VILLAGRAN, C. 1982. Estructura florística e historia del

bosque pantanoso de Quintero (Chile, V región) y su

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Voss, E. 1951. Ueber einige Rhynchitinen der chilenis-

chen fauna (Coleoptera: Curculionidae) (116. Beitrag

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Entomología, /: 175-185.

WERNER, F.G. 1975. 14 review of the chilean Anthicidae

(Coleoptera). Revista Chilena de Entomología, 8: 27-

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ZAPATA, S. 1970. Biología de Plagiodera erythroptera

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del Centro de Estudios Entomológicos, Universidad de

Chile, 10: 57-63.

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

ANEXO 1

LOCALIDADES DE MUESTREO

Localidad (de Norte a Sur)

IR AA O

W UY NN N» NN N NN N NN N D DN => ma ma mo pm pb plo po plo pl

2 OURAN RODA LAOAADNAO

EL BATO, Illapel

El ÑAGUE, Los Vilos

AGUA AMARILLA, Los Vilos

QUEREO, Los Vilos

PALO COLORADO, Quilimarí

LOS CRISTALES, Tilama

LA CANELA, Longotoma

QUINTERO, Quintero

SAN JERONIMO, Casablanca

TANUME, Pichilemu

PIEDRAS NEGRAS, Hualañe

EL RADAL, Molina

LA VEGA, Agua Buena

CANELILLOS, Carrizal

RARI, Empedrado

PELLUHUE, Pelluhue

CANELILLOS, Chovellén

LA VEGA, Parral

BULNES, Bulnes

LA FLORIDA, La Florida

COLLICO NORTE, Concepción

SAN JOSE DE COLICO, Curanilahue

PELECO, Lanalhue

MININCO, Collipulli

LOS ALAMOS, Ercilla

QUEPE, Quepe

LOS NIRRES, Pitrufquén

PANAM KM 737, Loncoche

SALTO DE AGUA, Lanco

LINGUENTO, Valdivia

CHAUQUEN, Panguipulli

Provincia

Choapa

Petorca

Valparaíso

Cardenal Caro

Curicó

Talca

Cauquenes

Linares

Ñuble

Concepción

Arauco

Malleco

Cautín

Valdivia

Latitud

W

31% 34”

SUSO

SE DN

SUS ON

32* 04”

SZAOS

SLDS

32* 47

ZA

34 12”

34" 58”

35" 24”

0 19

q SY

SIMSON

35" 49”

SS 0

36" 08”

36" 44”

36" 49”

36 49”

SUNZON

SOS

SUN

38” 04”

38732)

SMN

Io Pe

39" 24”

39" 43”

39% 41”

Longitud

S

TORSZ

Me Si

Se

IES

ZO

MALO

SALOR

SS

719 28”

CS

719 48”

71% 02”

IZ A09%

Ve? ar

72% 24”

ZAS

Yer? MZ

71 49”

72 18”

72% 40”

72% 43”

VIE

VÍIELY

ZA ZO%

22D

VD

ULI SXS

ZAS

TE DS

IZMIZA

ZUR

Altitud

msnm

960

30

100

25)

100

690

200

S0

370

340

400

450

230

470

290

20

400

160

100

250

100

SO

250

350

SO

50

200

45

136

148 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

pza A O PT A ES A, RENE ARAS AI A IN A A De a RON PAI

ANEXO 2

LISTADO DE ESPECIES, PRESENCIA Y ABUNDANCIA EN LOS 31 BOSQUES

PRESENCIA %Z ABUNDANCIA %

EPHEMEROPTERA

sp. 1 3 9,67 3 0,0285

sp. 2 4 12,9 6 0,0571

sp. 3 1 SEZZ 1 0.0095

sp. 4 1 3,22 1 0,0095

PLECOPTERA

Gripopterygidae

Limnoperla jaffueli (Navas) 17 54,8 121 1.1518

Gen. sp. 1 1 322 1 0.0095

Gen. sp. 2 2 6,45 5 0.0475

Notonemouridae

Neonemura sp. 17 54,8 66 0,6282

ORTHOPTERA

Gryllacrididae

Leiomelus sp. 2 6,45 2 0,0190

Rhaphidophoridae

sp. 3 9,67 3 0,0285

Tettigoniidae

Cosmophyllum pallidulum Bl. 14 45,1 19 0,1808

Cosmophyllum olivaceum Bl. 8 25,8 11 0,1047

Stenophyllia modesta (Bl.) 3 9,67 16 0,1523

Coryphoda albidicollis (Bl.) 1 3,22 1 0,0095

Gen. sp. 1 2 6,45 4 0,0380

Gen sp. 2 9 29,0 18 0,1713

Gryllidae

sp. 5 16,1 8 0,0761

Proscopiidae

Astroma striatum (Bl.) 1 3,22 1 0,0095

Hybusa sp. 1 3,22 2 0,0190

Acrididae

Antandrus viridis (Bl.) 1 SED 1 0,0095

PHASMATODEA

Pseudophasmatidae

Bacunculus phyllopus (Gray) 13 41,9 15 0,1427

HEMIPTERA

Psyllidae

Connectopelma dimorpha Burckhardt 3 9,67 70 0,6663

Connectopelma liturata Bl. 1 3,22 1 0,0095

Notophorina areolata (Bl.) 3 9,67 6 0,0571

Notophorina eugeniae (Kieffer ££ Herbst) 1 3,22 1 0,0095

Notophorina stigmaticallis (Bl.) 14 45,1 104 0,9900

Notophorina sp. 1 3.22 1 0,0095

Calophyidae

Calophya rubra (BL.) 1 3522 1 0,0095

Triozidae

Trioza sp. 1 8 25,8 51 0,4854

Trioza sp. 2 16 51,6 60 0,5711

Trioza miltosoma (Bl.) 9 29,0 63 0.5997

Aleyrodidae

Sp 1 3522 6 0,0571

Pz 1 3,22 1 0,0095

Margarodidae

Icerya

Gen.

Cicadidae

Tettigades

Cercopidae

Cicadellidae

Membracidae

Alchisme

Holdgatella

Biturritidae

Melizoderes

Delphacidae

Cixiidae

Achilidae

Dictyopharidae

Issidae

Flatidae

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

purchasi Maskell 1

Sd 1 2

ulnaria Distant 1

sp. 7

sp.1

sp.2

sp.3

sp.4

sp.5

sp.6

sp.8

sp.9

sp.10

sp.11

sp.12

sp.13

sp.14 1

sp.15

sp.16

sp.17

sp.18

sp.19

sp.20

pus

(=3

Rh] -N-»flr?gUue- a Ny0D0NoN- oo

rubrocostata (Bl.) 8

chepuensis Evans 1

osborni (Funkhouser) 21

variegatus (Funkhouser) 17

sp. 1

sp. 2

SpS

sp. 4

pd do

sp. 1

SpoeZ

SpieS

sp. 4

sp. 5

sp. 6

sp. 9

Pa 2 a ie LD 00 NN

sp. 1

SpaZ

sp. 3

sp. 4

Spr0l

sp. 2 2

sp. 3 1

sp. 1 1

sp. 2 5

sp. 6

SEDZ

6,45

372Z

ZDIS

19,3

35,4

6,45

193

29,0

6,45

1219

35,4

16,1

9,67

SEZZ

1249

35,4

SEZ2

22

6,45

3,22

DAS

SELZ

25,8

SELL

67,7

54,8

SDZ

3,22

SELZ

2D

6,45

25,8

12,9

3522

72D

SZZ

SEZZ

35,4

16,1

1240)

3722

SEDZ

6,45

SIDO

3722

16,1

19,3

94

82

== 0) n= —

21

0,0095

0,0190

0,0095

0,3236

0,2570

0,1903

0,0190

0,2189

0,3998

0,0285

0,1237

0.4759

0,0666

0,0285

0,0190

0,0761

0,3141

0,0190

0,0475

0.0255

0,0095

0,1047

0,0095

0,3998

0,0095

0,8948

0,7805

0,0095

0,0285

0,0095

0,1237

0,4188

0,0666

0,0095

0,1713

0,1999

0,1332

0,0190

0.0095

0,0190

0,0095

0,1523

0,1999

149

150

Saldidae

Anthocoridae

Lyctocoris

Macrotrachelia

Nabidae

Nabis

Miridae

Eurylomata

Prepops

Stenoparedra

Stenodema

Tuxenella

Dicyphus

Hyalodes

Phytocoris

Chileaia

Gen.

Tingidae

Stenocader

Phymatidae

Phymata

Reduviidae

Emesinae

Aradidae

Isodermus

Lygaeidae

Nysius

Syzygites

Rhaptus

Ischnodemus

Geocoris

Bergidia

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

sp.

sp. 1

sp. 2

sp. 3

campestris (F.)

conica (Bl.)

punctipennis Bl.

faminei Stal

picturata (Bl.)

circummaculata (Stal)

Sp

So» 2

sp. 3

dohrni (Stal)

fasciolaris (Bl.)

Sd 1

sp. 2

sp. 3

sp. 4

aff. bifasciata C. £ D.

similaris C. éx D.

cucurbitaceus (Spin.)

sp.

irroratus Bl.

obsoletus Bl.

marmoratus Bl.

rubrescens Bl.

sp. 1

PS

sp. 4

uretai Carvalho

sp. 1

sp.

0 JD ua uy non

tingidoides (Spin.)

elongata Sign.

nervosopunctata Sign.

gayi (Spin.)

ericae (Schill.)

poecilus (Spin.)

quadricollis (Spin.)

gayi (Spin.)

agilis (Spin.)

sobrinus (Bl.)

polychroma (Spin.)

atrata Ashlock

=D nu

hw

e. pu.

= 00 (Y 00 UY 0000 0 $ Bu —JOodNN-)yYeoauy mm moni on n=) == NN 00

NW m0

ZO

9,67

6,45

3,22

6,45

3,22

29,0

12,9

25,8

6,45

3722

6,45

22

322

3,22

SiZZ

9,67

25,8

9,67

3322

22,5

6,45

38,7

16,1

19,3

22,5

9,67

12,9

25,8

41,9

25,8

6,45

25,8

SL

16,1

3122

3,22

SEZZ

3,22

25,8

322

SELL

9,67

6,45

64,5

6,45

== Ny

—J == YUYO0 hp

uy

—

— pro

==

u) poo

BoNND-J)Da00 mm mo pus

00 159] IS

WO 0 Um (59)

0,0095

0.0380

0,0380

0,0761

0,0285

0,0095

0,2094

0,1618

0,2950

0,1332

0,0190

0,1047

0,0095

0.0571

0.1523

0.0666

0,0190

0,3046

0,0380

0,3807

0,0856

0,2475

0,6187

0.0285

0,4950

0,0380

0,1523

0,5806

0,5140

0,7900

0,3522

0,0380

0,4283

0,0190

0,2475

0,0095

0,0475

0,0190

0,4188

0,0095

0.2189

0,0761

0,7615

0,0285

Coreidae

Leptoglossus

Margus

Rhopalidae

Arhyssus

Liorhyssus

Acanthosomatidae

Planois

Ditomotarsus

Sniploa

Acrophyma

Phorbanta

Scutelleridae

Missipus

Pentatomidae

Comperocoris

Podisus

Acrosternum

MEGALOPTERA

Sialidae

Protosialis

NEUROPTERA

Coniopterygidae

Gen

Hemerobiidae

Hemerobius

Gayomyia

Megalomus

Megalomus.

COLEOPTERA

Carabidae

Monolobus

Aemalodera

Trechisibus

Metius

Agorum

Bradycellus

Lebia

Euproctinus

Callidula

Mimodromites

Dromius

Hydrophilidae

Enochrus

Leiodidae

Eupelates

Staphylinidae

Baeocera

Homalotrichus

chilensis (Spin.)

sp.

tricostatus (Spin.)

hyalinus (F.)

bimaculatus Sign.

punctiventris Spin.

obsoleta Sign.

impluviata (Bl.)

variabilis (Sign.)

variabilis (Spin.)

roehneri (Philippi)

nigrolimbatus (Spin.)

apicicornis (Spin.)

chilensis McLach.

sp.

sp. 1

sp. 2

sp. 3

falcata (Bl.)

stangei Gonz.

nigratus (Navás)

testaceus Sol.

testacea Jeannel

limbata Sol.

dentomaculata Sol.

sp.

flavipes (Dejean)

sp.

azurea Sol.

fasciatus (Sol.)

nigrofasciata (Sol.)

nigrotestaceus (Sol.)

guttula (Sol.)

maculipennis Sol.

sulcatulus Sol.

rugulosus Mateu

sp.

transversestrigosus (F. 61 G.)

atricollis Pic

nonguensis Lóbl.

striatus Sol.

sp.

a]

pun

a TSE SD A A SS NN uy

—

== hb o

29,0

16,1

41,9

SZD

6,45

12,9

6,45

SELZ

54,8

22,5

9,67

3,22

SEZZ

SD

16,1

12,9

41,9

DIS

3522

9,67

12,9

6,45

322

3,22

SEZZ

12,9

SI2Z

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

e AAAAAKAá — — _J_—

19

ES MS

68

a —)

A O O OS AS

a SN

0,0380

0,0285

0,0095

0,1237

0,5425

0,0095

1,0566

0,0951

0.0095

0,0666

0,1332

0,1713

0,1808

0,0475

0,1999

0,0095

0,0190

0,0475

0,0190

0,0285

0,0095

0,6473

0,2284

0,1332

0,0095

0,0666

0,0475

0,6758

0,1427

0,0095

0,0666

0.0666

0,0475

0,0190

0,0095

0,0666

0,0095

151

152

Thinodromus

Anotylus

Cheilocolpus

Loncovilius

Gen.

Pselaphidae

Scirtidae

Lucanidae

Sclerostomus

Glaphyridae

Lichnia

Scarabaeidae

Sericoides

Brachysternus

Barchysternus

Hylamorpha

Buprestidae

Mastogenius

Anthaxia

Cylindrophora

Agrilus

Elateridae

Dilobitarsus

Anacantha

Candanius

Bedresia

Ischnodes

Deromecus

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

sp.

sp. 1

sp. 2

sp.

discoideus (F. 61 G.)

sp. 1

sp. 2

sp. 3

sp. 4

sp. 5

6

Y

8

pm

NN» NyNNDN0ND90 gr Nk.

sp.

sp. 9

sp. 10

sp. 11

sp. 12

sp. 13

sp. 14

sp. 1

sp.

—

VDOo0 Dd UaAauN

ho

Um == U00w0N

Re

NO

cucullatus (Bl.)

—

(59)

sp.

variegatus (Germ.)

viridis (Sol.)

sp.

viridis Sol.

spectabilis Erich.

prassinus Guérin

sp.

elegans (Burm.)

DN N 0 Ju

sulcicollis Phil. 8 Phil.

concinna Mannh.

cordillera Obenb.

verecunda (Erich.)

thoracicus L. €: G.

+= — — JJ]

vitticollis (F. 82 G.)

sulcicollis Sol.

gracillimus (Cand.)

impressicollis Sol.

reedi (Cand.)

angustatus Sol.

N » == —»Uuyr

A DW =NR-uo-

mm

== Y OQ UU ma

bh = -—- uu

0,0095

0,0285

0,0095

0,0190

0,0095

0.0095

0,0285

0.7425

0,0666

0,6282

0,0095

0,0285

0,0571

0,0095

0,0285

0,0095

1,1327

0,9709

0,0475

1,7229

2,6178

0,1523

0,8757

0,1999

0,3617

0,0095

0,0190

0,0095

0,0666

0,0095

0,0285

0,0666

0,3617

0,0095

0,1903

0,0095

0,0350

0,0380

0,1903

0,1332

0,0095

0,0475

0,0285

0,0095

0,0380

Deromecus

Podonema

Pomachilius

Medonia

Agriotes

Elater

Anaspasis

Gen.

Trixagidae

Eucnemidae

Phanerochroeus

Lampyridae

Pyractonema

Cantharidae

Cantharis

Hyponotum

Plectonotum

Dysmorphocerus

Chauliognathus

attenuatus Sol.

cervinus Cand.

vittipennis Cand.

pallipes (Sol.)

melanurus Fleut.

inops Cand.

debilis Cand.

collaris Sol.

filicornis Sol.

fulvus Fleut

germaini Fleut

grisescens Cand.

sp. 1

sp. 2

impressa Sol.

deromecoides (Schw.)

sp. 1

punctatosulcata (Sol.)

truncatipennis Fleut

sp.

sp. 1

sp. 2

abdominalis (Sol.)

parallela (Sol.)

sp. 1

sp. 2

_—

=_

== N YU =»=N-==yyYu gr gg UN Yyg0u mn UU U

sp. 1

australis Cobos 1

compressicorne Sol.

sp. 1

sp.

sp. 9

sp. 10

sp. 11

sp. 12

0 3D Uu A YN

NU» »0nunagygauy — UU — Y

flavescens (F.Phil)

collaris (Sol.)

kraussei (F.Phil)

solieri (Pic)

grandicolle (Pic)

pyrocephalum (Sol.)

frontale (Pic)

sp. 1

sp.

sp. 8

variabilis (Sol.)

gracilis (F. Phil.)

pus

bb O UND =UYn >NyNayAapOo

AO ui Bb uy nn

12,9

16,1

6,45

9,67

DEZZ

6,45

61,2

16,1

35,4

19,3

DEZZ

9,67

SAZZ

16,1

41,9

6,45

SZZ

3,22

6,45

3722

16,1

9,67

6,45

SEZZ

3,22

SELL

9,67

3,22

16,1

3022

9,67

6,45

SELL

SEZZ

822

9,67

SELL

6,45

3,22

IZ

12,9

9,67

6,45

SEZZ

9,67

SL

SIZZ

6,45

9,67

3,22

19,3

12,9

Nr BO0DO0ON

38

N —

Dr bn

¡95

>

N4hRNNA2N-w0N0O

>

NN” BbnNnNnaN UU nn

ISS

Oo

N Y QN NN Yw0wo

13

34

0,0666

0,3712

0,0856

0,0571

0,0380

0,0095

0,0190

1,8752

0,0856

0,4950

0,3617

0,0190

0,0350

0,1047

0.2475

0,3712

0,0856

0,0095

0,0190

0,0380

0,0190

0,1142

0,0380

0,0300

0,0475

0,0095

0,1427

0.0190

0,2475

0,0190

0,0475

0,0856

0,0475

0,0190

0,0380

0,0095

0,1142

0,0095

0,0190

0,0380

0,4569

0,1903

0,0856

0,0285

0,0190

0,1903

0,0571

0,1237

0,0095

0,3236

0,0475

153

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

154

_ _»>_>- ___ »--- _»--_—_—

Chauliognatus

Dermestidae

Trogoderma

Bostrichidae

Dexicrates

Lyctus

Anobiidae

Microzogus

Ernobius

Anobiopsis

Hadrobregmus

Xyletinus

Xyletomerus

Calymmaderus

Stichtoptychus

Dorcatominae

Caenocara

Byrrhodes

Ptinidae

Ptinus

Peltidae

Diontolobus

Trogossitidae

Acalanthis

Cleridae

Silviella

Eurymetopum

Epiclines

Natalis

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

reedi Pic 1

rubiginosum (Sol.)

angustum (Sol.)

vicinum (Sol.)

sp. 1

sp. 2

A

robustus (Bl.) 1

sp. 1

sp.

sp. 2

capucinus Sol.

grandis Phil. £: Phil.

sublineatus (Pic)

obsoletus White

tenuivittatus White

homalus White

sp.

nigra (Phil. € Phil.)

humerale White

discoidale (Pic)

bimaculatus (Phil. €: Phil.)

Un 2aUYNn

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sp.

sp. 1 1

sp. 2 7

sp. 3 1

sp. 4 1

punctipennis Sol. 2

sp. 1 3,

sp. 2 2

sp. 3 1

sp. 4 1

sp. 5 7

sp. 6 1

quadrisignata Er. 1

nudatum (Spin.) 18

eburneocinctum (Spin.) 18

maculatum Bl. 1

prasinum (Spin.) 3

semiprasinum (Chevr.) 1

fulvipes Bl.

semirufum (F. 82 G.)

modestum (Phil. éz Phil.)

longulum (Spin.)

basalis Bl.

impressus (Spin.)

punctipennis Germ.

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0,0666

0,0190

0,0095

0,4188

0,0666

0,0190

0,0095

Natalis

Eurymetomorphon

Notocymatodera

Corinthiscus

Cregya

Solervicensia

Melyridae

Dasytes

Amecocerus

Astylus

Arthrobrachus

Brachidia

Nitidulidae

Cybocephalus

Nitidula

Cryptarcha

Epuraeopsis

Perilopsis

Gen.

Cucujidae

Catogenus

Protocucujidae

Ericmodes

Cryptophagidae

Stengita

Chiliotis

Languriidae

Loberus

Gen.

Erotylidae

Triplax

Coccinellidae

Coccidophilus

Stictospilus

Scymnus

Scymnini

Lindorus

Rhizobius

Coccidulini

Orynipus

Cranoryssus

Neoryssomus

laplacii Cast.

biguttatus Solerv.

modesta (Spin.)

denticollis (Spin.)

variipennis (Spin.)

ovata (Spin.)

luteus Sol.

tibialis Sol.

binotatus Sol.

derbesi Sol.

haemorrhoidalis Sol.

sp. 1

sp. 2

sp. 3

sp. 4

sp. 5

subaeneus Sol.

sp.

trifasciatus Guérin

nigromaculatus Sol.

sp. 2

sp. 3

sp.

chiliensis Reitter

complanata Germ.

lineola Erich.

maculipennis Sol.

flava Reitter

sp.

decoratus Newm.

sylvaticus Phil. $2 Phil.

fuscitarsis Reitter

sp.

formosus Reitter

sp.

valdivianus Phil € Phil

sp.

darwini Brethes

bicolor (Germ.)

maculus (Germ.)

nitidus (Phil. € Phil.)

vittatus (Phil. 82 Phil.)

sp. 1

sp. 2

sp. 3

lophanthae (Blaisd.)

sp.

sp. 1

sp. 2

sp.

variegatus (Phil. £ Phil.)

variabilis (Korschef.)

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51,6

6,45

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

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0,6853

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0,1523

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0,5521

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0,0190

0,1332

0,1808

0.1142

0,1041

0,0285

0,0475

0,0285

0,0095

0,0190

0,1713

0,0190

0,3807

0,5711

0,0285

155

156

Hyperaspis

Neorhizobius

Rodolia

Coleomegilla

Eriopis

Hippodamia

Adalia

Coccinella

Psyllobora

Coccinellini

Lathridiidae

Melanophthalma

Aridius

Enicmus

Gen.

Colydiidae

Sparactus

Ciidae

Cis

Gen.

Melandryidae

Serropalpus

Orchesia

Mordellidae

Mordella

Mordellaria

Mordellistena

Anthicidae

Anthicus

Ischyropalpus

Gen.

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

germaini Crotch.

sphaeridioides Muls.

sanguinolentus (Germ.)

cardinalis Muls.

quadrifasciata (Schoen.)

connexa (Germar)

variegata (Goeze)

bipunctata (L.)

deficiens Muls.

angulifera Muls.

chilena Weise

picta (Germ.)

sp.

seminigra Belon

pilosa Riicker

australis Dajoz

sp.

malouinensis Champ.

subfasciatus (Reitter)

heteronotus (Belon)

nodifer (Westw.)

sp.

transversithorax Dajoz

sp. 1

sp. 2

flexuosus (Sol.)

sp.

picta Sol.

sp. 1

sp. 2

luctuosa Sol.

erythrura F. €: G.

rufoaxilaris F. 81 G.

andina F. £. G.

castaneipennis F. á. G.

kraussei Phil. á Phil.

fumosa F. £1 G.

suturalis F. £ G.

proxima Sol.

argentipunctata Sol.

holosericea Sol.

abbreviata Sol.

solieri Csiki

sp. 1

sp. 2

sp. 4

sp. 5

scripta (F. 82 G.)

bicolor F. $1 G.

melanurus F.61.G.

curtisi (Sol.)

parallelus (Sol.)

sp. 1

sp. 2

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0,0951

0,0095

0,0380

0,0095

0,0571

Mitraelabrus

Aderidae

Dasytomorphus

Meloidae

Epicauta

Scraptiidae

Scraptia

Nemacerus

Salpingidae

Vincenzellus

Mycteridae

Loboglossa

Trachelostenidae

Trachelostenus

Tenebrionidae

Nyctopetus

Blapstinus

Heliofugus

Narsodes

Cerambycidae

Callisphyris

Hephaestion

Platynocera

Necydalopsis

Xenocompsa

Ancylodonta

Holopterus

Chenoderus

Tillomorpha

Callideriphus

Cleptonotus

Microcleptes

Aconopterus

Emphytoecia

Astyochus

Oectropsis

Neohebestola

Bruchidae

Lithraeus

Megacerus

Pseudopachymerina

Chrysomelidae

Metallactus

Pachybrachis

Lexiphanes

Mylassa

Chlamisus

Stenomela

Plastonothus

sp.

ruficollis F. 8 G.

pilme (Mol.)

sp. 1

sp. 2

incertus Sol.

sp.

inaequalis Sol.

sp.

punctulatus Sol.

sp. 1

sp. 2

sp.

vespa F. £ G.

pallidicornis F. 8: G.

rubriceps Bl.

gracilipes Bl.

femoralis Germ.

iridipennis F. £ G.

sp.

semipolita (F. £ G.)

nitidipennis Germ.

annulicornis Phil.

testaceus Bl.

myrmicaria F. £1 G.

laetus Bl.

subarmatus F. éz G.

araneus Newm.

variolosus F. é G.

cristatipennis Bl.

alboliturata (Bl.)

suturella (Bl.)

sp.

obliquatus (F. € G.)

latifrons Bl.

humeralis (bl.)

leguminarius (Gyll.)

egenus (Phil. £z Phil.)

pyrrhomelas (Phil. £ Phil.)

elegans (Bl.)

eulophus (Erich)

spinipes (Erich)

ochripennis Suffr.

gayi (Bl.)

signatipennis (Bl.)

variabilis (Bl.)

rubronotata (Bl.)

apricarius Lac.

pallida Erich

chalybaeus (Bl.)

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16,1

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

16

13

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46

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0,0380

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0,0571

0,0095

0,4093

1,7325

0,3141

0,2475

157

158

Psathyrocerus

Dictyneis

Glyptoscelis

Strichosa

Plagiodera

Chrysolina

Procalus

Halticella

Altica

Grammicopterus

Kuschelina

Protopsilapha

Alticinae

Anthribidae

Dinocentrus

Corrhecerus

Tropideres

Gen.

Belidae

Trichophthalmus

Attelabidae

Minurus

Apionidae

Apion

Curculionidae

Sitona

Platyaspistes

Megalometis

Hybreoleptops

Geniocremnus

Leptopiini

Parergus

Dasydema

Cyphometopus

Aegorhinus

Rhopalomerus

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

pallipes Bl.

fulvipes Bl.

asperatus (Bl.)

conspurcatus (Bl.)

terrosus (Phil. 82 Phil.)

sp. 1

sp. 2

pulvinosus (Bl.)

eburata Bl.

erythroptera (Bl.)

hyperici (Forster)

mutans (Bl.)

viridis (Phil. £ Phil.)

atrocyanea (Phil. 82 Phil.)

janthina (Bl.)

bellula Phil. £ Phil.

flavescens Bl.

decorata (Bl.)

pyrrhoptera (Phil. 8 Phil.)

signata (Bl.)

pallens (B1.)

sp. 1

sp. 2

asperatus (Bl.)

sp. 1

sp. 2

sp.

minutus (Bl.)

sp. 1

sp. 2

sp.

miltomerus (Bl.)

fulvescens (Bl.)

testaceus (Wat.)

violaceipennis (F. €: G.)

humerale Phil. 81 Phil.

pachymerum Phil. € Phil.

sp. 1

sp. 2

discoideus Gyll.

unicolor Perroud

spinifer Boh.

aureosquamosus (Boh.)

aureosignatus (Bl.)

villosus (Bl.)

chiliensis (Boh)

sp.

hirtella Bl.

sp.

nodipennis (Hope)

servillei (Gay € Sol.)

sp.

phaleratus Erich

superciliosus (Guérin)

tenuirostris Bl.

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0,1713

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0,2284

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0,7805

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0,0095

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0,0190

0,3617

0,0095

0,1142

0,0951

Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

Omoides

Listroderes

Listronotus

Tartarisus

Gayus

Berberidicola

Neomagdalis

Apocnemidophorus

Smicronyx

Neopsilorhinus

Curculioninae

Anthonomus

Psepholax

Acalles

Lembodes

Anaballus

Rhyephenes

Eucalus

Scolytinae

Molytinae

TRICHOPTERA

Hydroptilidae

Limnephilidae

Kokiridae

fam. indeterminada

HYMENOPTERA

Formicidae

Pseudomyrmex

Solenopsis

Iridomyrmex

Tapinoma

Lasiophanes

Myrmelachista

flavipes (Bl1.)

humeralis azarae Kusch.

validus Kusch.

annulipes Bl.

cyrticus (Desbr.)

signatipennis (Bl.)

elegans (Bl.)

ater (Phil. 82 Phil.)

unicolor (Bl.)

pruinosus (Bl.)

obsoletus (Bl.)

chilensis Kusch.

variegatus (Bl.)

valdivianus (Phil. 8 Phil.)

collaris (Bl.)

sp.

berberidis Clark.

dentipes (Boh.)

Jfuscescens Bl.

varius Gemm.

lineolatus Bl.

cinerascens Bl.

sp. 1

sp. 2

sp. 3

sp. 4

albosignatus Chevr.

plagiatus Bl.

gayi (Guérin)

humeralis (Guérin)

tessellatus (Bl.)

sp.

sp. 1

sp. 2

sp.

HhuD

sp.

lynceus (Spin.)

sp.

humilis (Mayr)

antarcticum Forel

sp.

hoffmani (Forel)

nigriventris (Spin.)

picinus (Roger)

mayri Forel

hoffmani Forel

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Rev. Chilena Ent. 21, 1994

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Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

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Solervicens y Elgueta: Insectos de follaje de bosques pantanosos en Chile

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SIMPOSIO DE CONDUCTA ANIMAL

XV CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLOGIA

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 165-170

SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA-UNIV. AUSTRAL DE CHILE

VALDIVIA - 1993

COMPORTAMIENTOS PRECURSORES DE VIDA SOCIAL EN APOIDEA

(HYMENOPTERA).

E. CHIAPPA e

RESUMEN

Se realiza una revisión bibliográfica de trabajos relacionados con la conducta social de abejas

primitivamente sociales, particularmente del género Ceratina. Se analizan algunas características y

conductas que podrían conducir a la sociabilidad, tales como la longevidad de las hembras, la

tolerancia mutua, la defensa de los nidos, el intercambio de alimentos, el forrageo para los

componentes de un mismo nido y la flexibilidad conductual.

Desde el momento en que el mismo Darwin

admitía que la evolución de la esterilidad de

las castas sociales era difícil de interpretar,

para su Teoría de la Evolución por medio de la

Selección Natural, esta situación, en que los

individuos se conducían como si no maxi-

mizaran su propia adecuación, se presentó

como un problema desafiante para los biólo-

gos.

Varias explicaciones teóricas se han plan-

teado sobre el origen y el desarrollo de la so-

ciabilidad en los Hymenoptera, como la teoría

genética de Hamilton en 1964. Estas ideas,

debido a lo interesante y atractivas que se

mostraron, desencadenaron una serie de estu-

dios al respecto, ya que se vieron como una

poderosa explicación de aplicación muy gene-

ral. Otras teorías que se han propuesto sobre

la evolución social, son la llamada manipu-

lación parental (Alexander, 1974; Michener y

Brothers, 1974) y el mutualismo, (Lin y Mich-

ener, 1972) que tratan de explicar el man-

tenimiento del comportamiento altruísta y el

origen de la sociabilidad en las especies,

comentarios sobre las cuales omito porque

están fuera del ámbito de mi tema.

lUniversidad de Playa Ancha de Ciencias de la Educa-

ción. Casilla 34-V, Valparaíso - Chile.

Varios autores (por ejemplo, Crozier, 1979)

han afirmado que, además del aspecto

genético, hay otros factores que pueden con-

ducir al desarrollo de la sociabilidad, como

sería un ciclo de vida apropiado, (con sobre-

posición de generaciones) la posesión de

estructuras que puedan manipular el medio

ambiente (como mandíbulas) y además una

preadaptación que permita la cohesión de los

grupos, como podría ser un sistema de recono-

cimiento de parentesco selectivamente venta-

jOSO.

Michener (1985) ha planteado que la evolu-

ción de un caracter, se puede hipotetizar a

través de los estados intermedios, especial-

mente si las fases ancentral y derivada, de ese

carácter, son fácilmente reconocibles. Los

estados intermedios se pueden, entonces ubi-

car en una secuencia lógica, aplicando un

método comparativo de reconstrucción de la

evolución. Este método ha sido usado desde

Darwin y, ya Wheeler en 1923, postuló 7 eta-

pas desde los insectos de vida solitaria hasta

los insectos que poseen vida social. Lo mismo

hizo Evans (1958) para las avispas, ya que

pensaba que se cumplían 13 pasos entre las

avispas primitivas y las eusociales. El mismo

Michener (1958), postuló las rutas o vías

seguidas por las abejas desde la vida solitaria

hasta la eusociabilidad. Estos pasos pueden,

sin embargo, no presentarse y la vida social

166 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

puede originarse directamente sin pasar por

etapas intermedias.

De acuerdo a autores como West-Eberhard

(1978), además de una interpretación teórica,

se necesita información más precisa sobre las

vidas de las abejas y avispas primitivamente

sociales, especialmente de aquellas que se de-

senvuelven en los límites de la vida social y

solitaria, ya que tales especies pueden revelar

los orígenes primeros de la sociabilidad y los

mecanismos conductuales involucrados.

Según Michener et al., (1974), entre los

halíctidos (Hymeoptera: Halictidae), existen

los siguientes niveles de sociabilidad, los que

tomaré como generales para el resto de los

Apoidea:

- especies solitarias, con nidos donde una

sola abeja cria a sus hijos en forma indivi-

dual (1.e. Coenohalictus).

- especies comunales, parasociales y quasiso-

ciales, son términos semejantes y Michener

propone llamar parasociales a todas ellas.

Se caracterizan porque en el mismo nido

hay varias hembras, pero no existe división

de trabajo, sobreposición de generaciones

ni cuidado parental compartido (i.e.

Ctenomia, Agapostemon).

- especies semisociales, en las que existen

castas y cuidado parental pero no hay so-

breposición de generaciones (i.e. Augochlo-

ropsis).

- y especies eusociales donde existe división

del trabajo, sobreposición de generaciones

y cuidado parental en conjunto (i.e.

Evyleus).

Sakagami y Maeta (1977), introdujeron el

término eosocial, para colonias quasisociales

que involucran dos generaciones.

Las Familias de Apoidea que presentan

especies con conducta parasocial, por lo

menos parte del tiempo, son las siguientes:

- Andrenidae (Panurginae y Andreninae),

- Megachilidae (Megachilini y Anthidiini),

- Halictidae (Nomiinae, Augochlorini y

Halictini),

- Anthophoridae (Eucerini, Exomalopsini y

Ceratinini),

- Apidae (Euglossini)

Las Familias con conducta primitivamente

eusocial son:

- Halictidae (Augochlorini y Halictini)

- Apidae (Bombini)

- Anthophoridae (Ceratinini, Allodapini y

Xylocopini)

Con conducta eusocial existe una sola fa-

milia:

- Apidae: (Apini y Meliponini)

De estos grupos me voy a referir especial-

mente a Augochlorini, Halictini, Allodapini y

Xylocopini, porque han sido los grupos sobre

los cuales se tiene el mayor número de obser-

vaciones de conducta social primitiva y al

género Ceratina porque, personalmente, es el

grupo que más conozco.

La idea de esta presentación coincide con la

idea de Michener (1985) de que existen ciertas

características conductuales que se pueden in-

terpretar como tendientes a la vida social las

que se pueden encontrar en abejas básicamente

solitarias pero que, sin embargo, también

pueden constituir nidos naturales donde co-

habitan asociaciones madre-hijas o hembras de

la misma generación. Hay que hacer notar que

estas conductas, por si mismas, no comprome-

ten la aparición de sociabilidad pero si son fa-

vorables a ella.

En este contexto describiré algunos hábitos

interesantes, posiblemente significativos en la

adquisición de la vida social (Sakagami y

Maeta, 1977).

En primer lugar, el comportamiento de re-

moción de las fecas de las larvas realizada por

la madre. En algunos casos el nido está cons-

tituido por un conjunto de celdas seriadas, di-

vididas por paredes de separación. La pared

del fondo del nido corresponde a un tapón

fabricado por las hembras, que tiene importan-

cia en la activación del nido, la que ocurre al

poco tiempo que esta estructura es terminada.

En especies como C. japonica y C. flavipes las

abejas abren las separaciones y entran frecuen-

temente en las celdillas reconstruyendo fácil-

mente las paredes lo que probablemente tiene

una función sanitaria para los estados juve-

niles y, en las larvas defecantes, se relaciona

Chiappa: Comportamientos precursores de vida social en Apoidea 167

con la remoción de las fecas. Este compor-

tamiento aparece en los nidos en que ya exis-

ten varias celdillas construidas y con huevos

sobre las masas de polen, pero se intensifica

cuando los nidos contienen larvas y la hembra

ya no tiene obligaciones de postura ni labores

de forrajeo. Las fecas son pulverizadas con

las mandíbulas e incorporadas a las paredes

reconstruidas. El tapón del extremo del nido

recibe la mayor cantidad de las fecas, que

provienen de la la. y 2a. celda. Para las

celdas posteriores las fecas producidas por una

determinada celda son incorporadas a la pared

precedente, además se incorporan las larvas

muertas y los restos de polen que no fueron

comidos por ellas. Sólo en los nidos, en que

han emergido algunos inmaduros, la pared de

la última celdilla, a veces, no es reconstruida y

el huevo, larva o pupa sufre serios riesgos y,

muchas veces, muere. En un segundo caso,

como en C. ¿watai y en C. okinawana, nunca

se construye la última pared, las fecas no son

removidas y permanecen en cada celda. C,

megastigmata, muestra una tercera forma de

hábito, la abeja no entra en las celdas antes

que todas las larvas consuman el polen: pronto

después que la larva más joven a comido la

masa de alimento, tanto las paredes, como las

fecas de las larvas y los restos de polen son

eliminados de una sola vez fuera del nido.

Las paredes no las vuelven a reconstruir y los

inmaduros se encuentran en una cavidad

común (Sakagami y Maeta, 1977).

También muchas especies de Allodapinae,

socialmente más avanzadas que Ceratina, con-

firman un contacto entre la madre y los in-

maduros. Allodapulla (Michener et al., 1974)

se caracteriza por una completa omisión de las

paredes de las celdas, porque realiza remoción

de las fecas y aprovisionamiento progresivo.

Este tipo de aprovisionamiento también ocurre

en el género Braunsapis aunque con mayores

refinamientos, que consiste en el aporte de go-

tas de néctar que colocan ante la larva (Maeta

et al., 1985). Todas estas conductas posibili-

tan el contacto entre los individuos de la colo-

nia, tanto juveniles como adultos. En otras

abejas en que se conoce este tipo de contacto

entre la madre y sus crías es en el subgénero

eusocial Lassioglossum (Evyleus) de la familia

Halictidae (Knerer y Plateaux-Quénu, 1966) y,

también, en Lassioglossum (Dihalictus)

zephyrum las hembras tienen el hábito de

abrir, inspeccionar, remover las fecas y cerrar

las celdillas (Batra, 1968).

En C. japonica, C. flavipens, C. iwatai y C.

okinawana, el contacto entre madre y crías es

frecuente e involucran más de una simple

coexistencia, puesto que los juveniles son ali-

mentados por la madre y, también, en los ca-

sos en que hay más de una hembra en los

nidos suele ocurrir trofalaxis de parte de una

de ellas.

Otra conducta presocial es el transporte de

inmaduros dentro del nido. En muchas espe-

cies del género Ceratina, los adultos recién

emergidos alcanzan la entrada del nido

pasando sobre los hermanos más jóvenes pero

sin dañarlos, reconstruyendo las paredes a

medida que van avanzando, pero no lo hacen

de forma tan perfecta como los adultos paren-

tales. Los juveniles de C. japonica, C.

flavipes y C. okinawana empujan hacia atrás a

sus hermanos, de modo que el espacio ocu-

pado por los inmaduros se va acortando para

dejar mayor espacio a la entrada del nido, en

donde los adultos recién emergidos se van

acumulando. Alli permanecen por algunos

días, durante los cuales son alimentados por la

madre y la obrera hasta que ellos mismos

salen a procurarse alimento fuera del nido. La

habilidad para transportar inmaduros también

se ha observado entre los Allodapine, pero

más perfectamente que en Ceratina.

Se puede recordar que estos transportes de

inmaduros han sido muy perfeccionados en

algunas especies de Formicidae, en donde se

realizan habitualmente.

Otras conductas, en relación a una potencial

vida social, son aquellas relacionadas con el

rango de vida de las hembras adultas, y tal

como ocurre en Xylocopinae, la vida de las

abejas del género Ceratina es inusualmente

largo. En muchas abejas y avispas solitarias

la madre muere antes de la emergencia de la

progenie. Los encuentros entre madre e hijos

nunca ocurren, son muy raros o no van más

allá de una sola temporada.

En las especies de vida solitaria, la vida

prolongada de las hembras es aceptada como

precursora de vida eusocial. En varias espe-

cies del género Ceratina (C. asuncionis, C. ja-

168 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

ponica, C. flavipes, C. iwatai y C. megastig-

nata), se ha registrado hibernación en algún

porcentaje de los nidos (Sakagami y Maeta,

TO

La subfamilia Xylocopinae es conocida por

lo largo de la vida de las hembras, lo que

ocurre, incluso en las especies solitarias. Las

observaciones realizadas muestran que la vida

puede extenderse, a veces, por más de dos

años; esta longitud de vida se conoce en las

abejas eusociales de la Familia Apidae y tam-

bién en el halíctido Lasioglossum (Evylaeus)

marginatun, donde la fundadora de un nido

puede durar hasta 5-6 años lo que es, por lo

demás, inusual entre los Apoidea (Plateaux-

Quénu, 1959). En varias especies del mismo

género se ha probado que las hembras pueden

sobrevivir hasta la temporada siguiente (Saka-

gami y Fukuda, 1972).

Después de terminar de ovipositar y forra-

jear, las abejas pasan mucho tiempo a la en-

trada del nido cumpliendo la función de

guardianas. Está demostrado estadísticamente

que esta conducta, agregada al cuidado de los

inmaduros que realiza la madre, disminuye la

mortalidad de las crías cuando se comparan

con nidos que han quedado huérfanos (Saka-

gami y Maeta, 1977). La madre parece inefi-

ciente en prevenir ataque por hongos o

parásitos de gran tamaño, pero los pequeños

como Emplemus, Eurytoma, Melitobia, Dio-

morus, Hockena, y algunos fóridos, se encon-

traron sólo en los nidos sin madre. Este rol de

guardia contribuye a la cooperación entre las

hembras de un nido, liberando a la reina de

tareas como el forrajeo.

Un hecho importante es el hallazgo de ni-

dos con dos o más hembras durante el período

de reproducción. Ya en 1962, Michener ob-

servó nidos de Ceratina australensis habitado

por dos hembras con ovarios desarrollados.

Se dijo anteriormente, que en la Familia

Halictidae, hay todo tipo de formas sociales.

También se han encontrado nidos de otras abe-

jas africanas y japonesas con más de una hem-

bra. El que estos nidos no sean simplemente

una vida junta, se sugiere por el largo del

nido, siempre mayor que los nidos solitarios

tomados como control (Sakagami y Maeta,

1969).

Dos rasgos muy peculiares, de las hembras

que comparten los nidos, deben ser realzados.

El primero es la variabilidad en tamaño, de-

bida según Lin y Michener (1972), al prolon-

gado período de reproducción, lo que expone a

las crías a condiciones ambientales variables

según la estación del año, varibilidad que está

ligada a las diferencias de casta de algunas

especies de halíctidos eusociales. Entre las

hembras de las colonias hay una correlación

positiva entre el tamaño corporal, el desarrollo

de los ovarios y el estado de inseminación. En

muchas colonias semisociales o eusociales, la

reina es más grande que las obreras. Cuando

las abejas son más o menos equivalentes re-

productivamente, en las asociaciones quasiso-

ciales, las diferencias de tamaño son menores

(Michener, 1985).

El segundo rasgo, es la notable disminución

de la actividad de las hembras reproductoras,

que permanecen por uno o dos días a la en-

trada del nido, sin realizar ninguna actividad.

Tal conducta se relaciona, posiblemente, al

largo período que necesitan los huevos para

madurar ya que ocurre, que entre las especies

de Xylocopa y de Ceratina, es donde se pre-

sentan los huevos de mayor tamaño en

Hymenoptera.

Un hecho interesante que pudimos compro-

bar en observaciones realizadas en Ceratina

okinawana, es que en esta especie, la socia-

bilidad es flexiblemente cambiante, de social a

solitaria y viceversa.

La flexibilidad social intraespecífica es in-

terpretada por Yanega (1988), dependiendo de

presiones ecológicas directas y como un arte-

facto demográfico que produce variación con-

ductual controlada. Cree que la estructura

social en las colonias de Halictus rubicundus

se deben a la mortalidad de las hembras con

rol de reina y a la dispersión de la progenie,

que abandona el nido para entrar en diapausa.

Las siguientes conductas, han sido consi-

deradas clave en el estudio de distribución de

tareas y determinación de castas en varias

especies primitivamente sociales y, fueron las

que nosotros medimos a través de su frecuen-

cia de ocurrencia, para mostrar la flexibilidad

conductual de las abejas.

Chiappa: Comportamientos precursores de vida social en Apoidea 169

Forrajeo de polen: esta tarea da indicios so-

bre cual de las abejas desempeña el papel de

obrera.

Oviposición: la postura es realizada general-

mente por la hembra de mayor tamaño, domi-

nante y que tiene el rol de reina en el nido.

Oofagia: Las reinas limitan la reproducción

de las obreras comiendo sus huevos. Como

las dos hembras son aptas para ovipositar,

especialmente en los casos en que ambas pre-

sentan tamaños semejantes, la oofagia es

mucho más frecuente en algunos nidos que en

otros.

Trofalaxis: La entrega de néctar entre los in-

dividuos es un importante indicio de acep-

tación de dominancia por parte de la hembra

que entrega néctar. Particularmente ocurre

este comportamiento cuando la forrajera llega

al nido o cuando solicita el paso para tratar de

abandonarlo.

Guardia a la entrada del nido: la guardia es

considerada de particular significado y tarea

característica de la abeja reina.

En nidos inducidos, (formados por madre e

hija, hermanas o por hembras sin relación de

parentezco pero de la misma temporada),

aquellos ejemplares con conducta de reina y

obrera fueron artificialmente removidos en

forma alternativa. Al retornar al nido el indi-

viduo excluido era nuevamente aceptado por

el residente, luego de haber estado ausente en-

tre 2-6 días.

Si el individuo que permanecía en el nido

era la reina, empezaba a forrajear muy pronto

después de la exclusión de la compañera,

mientras que si se trataba de la obrera, con-

tinuaba forrajeando y ovipositando normal-

mente. La hembra que permaneció en el nido

continuó con las tareas del nido en 70.8% de

los casos.

CONCLUSIONES

- Una contribución importante para la forma-

ción de colonias, deben ser estas asociacio-

nes que se producen debido a la longitud

de vida de las hembras, lo que permite la

ocurrencia de individuos de diferentes

generaciones, así como también la toleran-

cia mutua, la defensa de los nidos, el inter-

cambio de alimentos y el forrajeo para los

componentes de un mismo nido.

- Nuestras observaciones muestran que en

Ceratina okinawana, hay una flexibilidad

conductual que se mantiene aún cuando la

sociabilidad se haya establecido dentro de

los nidos.

- Se observa una variación intraespecífica en

la expresión de la conducta social, ya que

las hembras no sólo viven juntas, sino que

se realiza un ajuste conductual, regulando la

intensidad con que cada una efectúa los tra-

bajos en el nido.

- Esto posibilita una plasticidad en el reperto-

rio de comportamiento, que abarca desde

una vida solitaria hasta un sistema rudimen-

tario de castas dentro de la especie que,

quizás, es importante en permitir la evolu-

ción social.

En Chile tenemos un género endémico, el

género Manuelia Vachal, que es el grupo más

primitivo de los Xylocopinae, cuyo estudio

podría darnos todo tipo de datos interesantes

en la comprensión del problema de la adquisi-

ción de la vida social y servirnos de com-

paración de la estructuración social de las

abejas sociales y parasociales. En los nidos de

las especies de Manuelia que hemos obser-

vado, hay gran semejanza con los nidos de

Ceratina que presentan paredes de separación

entre las celdillas, particularmente me refiero

a M. gayi y M. postica y aunque no existen di-

visiones en los nidos de M. gayatina, hemos

encontrado hasta tres hembras compartiendo el

mismo nido, lo que permite pensar que estas

especies, por lo menos en dos de ellas, tam-

bién se presentan rasgos conductuales tendien-

tes a la sociabilidad.

Finalmente, habría que tomar en cuenta que

en los climas típicamente tropicales, la socia-

bilidad debería ser más fácilmente compatible

con la vida solitaria, tal como ocurre en

muchas abejas de la subfamilia Allodapinae

(Michener, 1971), debido a que las especies

pueden ser multivoltinas. Por otra parte, en

las especies solitarias de clima temperado que

son univoltinas, por adquisición de diapausa,

170 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

parece más difícil que pueda ocurrir dicha

compatibilidad.

LITERATURA CITADA

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SIMPOSIO DE CONDUCTA ANIMAL

XV CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLOGIA

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 171-174

SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA-UNIV. AUSTRAL DE CHILE

VALDIVIA - 1993

DESARROLLO Y GENETICA DE PATRONES DE MOVIMIENTO EN LARVAS DEL

GENERO DROSOPHILA

RAUL GoDOY-HERRERA!

RESUMEN

Este trabajo revisa patrones de dispersión de larvas de especies del género Drosophila. La forma

como las larvas de D. melanogaster, de D. simulans, de D. pavani, de D. gaucha y de D. hydei, se

trasladan de un lugar a otro son relativas a: 1) los ambientes físicos donde ellas realizan sus

actividades, 11) la edad o etapa del desarrollo que se estudie y 111) el genotipo de estos preadultos.

Durante el desarrollo larval de Drosophila se producen cambios en la arquitectura del genotipo que

controla conductas larvales. Estos cambios son responsables de alteraciones de los patrones de

movimientos de esos preadultos. Se argumenta que cambios conductuales ligados al desarrollo

larval, representan respuestas adaptativas de estos preadultos a los ambientes cambiantes y efímeros

en que ellos viven.

ABSTRACT

Larval dispersal patterns of some Drosophila species are examined in this paper. The way in that

larvae of D. melanogaster, D. simulans, D. pavani, D. gaucha and D. hydei move from one place to

other depends on: 1) physical characteristics of their breeding sites, 11) larval age and i11) larval

genotype. As larval development proceeds some changes in the genetic architecture of the genotype

controlling a variety of larval behaviors occur. Most of these changes are responsibles of

modifications in the larval movement patterns. It is argued that those larval behavioral changes of

Drosophila are adaptive responses. They contribute to adjust the larvae to changing and ephemeral

envirorments of their breeding sites.

INTRODUCCION

Muchas variables influyen en la conducta lar-

val de Drosophila. Comparadas con los adul-

tos, las larvas de Drosophila están restringidas

severamente en sus movimientos por el tipo de

sustratos en el cual se desarrollan (Godoy-

Herrera et al., 1989). Estos sustratos son de

tamaño relativamente pequeño, constituídos

por partes de vegetales y de frutos en descom-

posición (Brncic, 1987). Estos ambientes,

esencialmente transitorios y efímeros, exhiben

condiciones microecológicas que cambian

"Depto. Biología Celular y Genética, Facultad de

Medicina Norte, Universidad de Chile, Casilla 70061,

Santiago (7) - Chile,

(Recibido: 5 de mayo de 1994. Aceptado: 13 de julio

de 1994)

continuamente en el tiempo (Carson, 1971).

Estas características de los sitios de crianza de

muchas especies de Drosophila pueden limitar

seriamente la eficiencia de las larvas para de-

tectar y aprovechar recursos tales como ali-

mento y espacio. Sin embargo, las larvas de

éste género tienen patrones de conducta que

les ayudan a sobreponerse a estas condiciones

ambientales. Es asi como ellas utilizan infor-

mación del ambiente (por ejemplo diferencias

de humedad, consistencia y textura de sus-

tratos) para modificar adaptativamente su con-

ducta (Godoy-Herrera et al., 1989).

Una de las conductas más bizarras de las

larvas de Drosophila melanogaster es excavar

(Godoy-Herrera, 1977). La excavación del

medio por las larvas de Drosophila es un me-

canismo para dispersar y utilizar el alimento y

el espacio. La conducta excavatoria es de im-

172 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

portancia cuando el número de individuos por

volumen es alto. Es asi como en condiciones

de alta densidad, las larvas de D. melanogas-

ter responden excavando más profundamente

en el alimento (Godoy-Herrera, 1977). Al fi-

nal del período larval, estos preadultos buscan

un lugar para pupar. [En un sustrato seco

(arena), las larvas excavan y penetran en él y

como resultado la mayor parte de las pupas

están enterradas en la arena. En un ambiente

menos restrictivo (arena húmeda), la mayor

parte de las larvas no excavan y una cantidad

substancial de pupas de D. melanogaster se

detectan en la superficie del sustrato (Godoy-

Herrera et al., 1989).

El propósito de la presente contribución es

revisar la conducta de las larvas de Droso-

phila. En particular, se revisará la genética de

conductas larvales de Drosophila. Los efectos

de la edad larval sobre la conducta de estos

preadultos son de particular interés, porque los

cambios conductuales que causa el desarrollo

larval están sintonizados con la ecología de

éstos preadultos.

EXCAVACION Y DISPERSION DE

LARVAS DE DROSOPHILA

Muy poco se conoce sobre patrones de disper-

sión larval en Drosophila. Es escasa la infor-

mación sobre la contribución del genotipo a

estas conductas; la mayor parte de los estudios

de centran en la especie D. melanogaster

(véase a Levine et al., 1987). Debido a la

naturaleza transitoria y cambiante de los sitios

de crianza de muchas especies de Drosophila,

las larvas están obligadas a ajustarse con-

tinuamente a nuevas condiciones ecológicas.

Muy poco se comprende este proceso. Se de-

bería esperar que las conductas responsables

de la dispersión larval de Drosophila

mostraran flexibilidad. En otras palabras, lar-

vas de diferentes edades de Drosophila de-

berían estar dotadas de formas de conducta

que las capacitaran para buscar y encontrar el

ambiente en el cual se encuentren mejor ajus-

tadas.

La excavación de sustratos es común para

varias especies de Drosophila; Mc Coy (1962)

ha informado que con excepción de D. busckil,

larvas de D.melanogaster, D. hydei, D.

tripunctata y D. quinaria, excavan en frutos

de tomates caídos en el suelo. Carton y Sok-

olowski (1992) encontraron que, en la natu-

raleza, un parásito himenóptero contribuye a

mantener las frecuencias de larvas "vagabun-

das" y de larvas "quietas" de D. melanogaster.

Estos son dos psicomorfos larvales que di-

fieren en actividad locomotora. Carton y

David (1985) encontraron que larvas "quietas"

permanecen en las capas superficiales de los

sustratos donde se crían y son infectadas por

parásitos himenopteros en mayor proporción

que las larvas "vagabundas" que se introducen

en el sustrato.

Asi, la conducta excavatoria de Drosophila

parece que está sometida permanentemente a

presiones selectivas. Los factores ambientales

que se cree actúan como agentes selectivos

son: 1) número de larvas de la misma y de

otras especies de Drosophila (Godoy-Herrera,

1977 Levine et al: 1987), 1) *presenciarde

parásitos (Carton y David, 1985; Carton y

Sokolowski, 1992) y 111) características físi-

cas de los sustratos donde se crían esos

preadultos (Godoy-Herrera et al., 1989). Más

investigaciones deberían identificar otros fac-

tores ambientales que influyen en la ex-

cavación larval.

GENETICA Y DESARROLLO DE LA

CONDUCTA EXACAVATORIA.

Godoy-Herrera (1977) estudió el desarrollo de

la excavación de sustratos por larvas de varias

cepas de D. melanogaster. Este autor llenó

tubos de vidrio de 2,5 x 10 cm con 4 ml de

medio de Burdick (1954) mezclados con car-

bón vegetal pulverizado finamente (2 gm/100

ml de medio). Después de enfriado, éste

medio se cubrió con 2 ml del mismo medio sin

carbón. El espesor del medio sin carbón fue

de 4 mm. Algunas larvas de D. melanogaster

excavaban como se reveló por el hecho que su

tracto digestivo contenía carbón (larvas ex-

cavadoras). Otras larvas permancecía sin

teñirse presumiblemente porque no excavaron

y consumieron alimento sin carbón de la su-

perficie del medio de cultivo (larvas no ex-

cavadoras).

Godoy-Herrera (1986) encontró que la ex-

cavación del medio de cultivo aumenta con la

Godoy-Herrera: Genética de patrones de movimiento en larvas de Drosophila 173

edad larval. Cruzamientos entre 4 cepas de D.

melanogaster en todas las combinaciones

posibles (cruces dialélicos), revelaron domi-

nancia y heterosis para excavar. Un análisis

biométrico realizado a las 72 y a las 108 horas

de desarrollo larval, confirmó la dominancia

para excavar y la presencia de genes aditivos.

La dominancia para excavar y dispersar

aumenta con la edad larval (Godoy-Herrera et

al., 1993). Estos hallazgos están en línea con

los informados por Sewell et al. (1975) rela-

tivos a la conducta de la alimentación de lar-

vas de D. melanogaster. Ellos encontraron

que, en ésta especie, la tasa de alimentación es

dependiente de la edad larval. La tasa máxima

de ingesta de alimento ocurre al comienzo del

tercer estado del desarrollo larval (72 horas de

edad). Se esperaría que la excavación estu-

viera en paralelo con la tasa de alimentación

ya que la excavación es un mecanismo para

acceder a alimento todavía no consumido.

Los datos aportados por Godoy-Herrera

(1986) se ajustan a esta predicción.

Las larvas de las especies gemelas lati-

noamericanas D. pavani y D. gaucha también

aumentan la excavación con el desarrollo (Go-

doy-Herrera, 1986). Después de las 132 horas

de edad, las larvas de D. pavani penetran más

de 4 mm en el sustrato (espesor del medio sin

carbón), es decir el 100% de las larvas mues-

tran carbón en su tracto digestivo. [En con-

traste, después de las 132 horas de desarrollo

larval, un 85% de las larvas de D. pavani

muestran carbón en su estómago y un 15% de

las larvas permanecen en la zona superior del

sustrato hasta el final del período larval.

DESARROLLO DE OTRAS CONDUCTAS

LARVALES

La conducta excavatoria de las larvas de D.

melanogaster está compuesta por varios ele-

mentos: 1) locomoción, 11) giros, 111) respuestas

a la gravedad, iv) respuestas a la luz y v)

respuestas a congéneres y/o a larvas de otras

especies (revisión en Godoy-Herrera ef al.,

1984, 1992, 1993 y Godoy-Herrera, 1993).

Para otras especies de Drosophila los compo-

nentes de la excavación larval se conocen po-

bremente (Troncoso et al., 1987).

La genética y el desarrollo de patrones lar-

vales de movimiento de D. melanogaster y de

su especie gemela D. simulans, los estudiaron

Troncoso et al. (1987). Ellos encontraron que

la locomoción larval aumenta con la edad,

pero la tasa de cambios de dirección no se

modifica sustancialmente entre las 24 y las 96

horas de edad larval. Como consecuencia, el

patrón de movimiento de Drosophila tiende a

ser más recto a medida que transcurre el de-

sarrollo larval. Esta interacción entre los pa-

trones de desarrollo de la locomoción y de

giros probablemente contribuye a que las lar-

vas construyan túneles rectos. Troncoso et al.

(1987) también informan que la tasa de giros

que realizan las larvas de D. melanogaster

parece depender de un par de genes mayores

que actúan aditivamente.

En un medio nutritivo, las larvas de D.

simulans disminuyen la locomoción y realizan

más giros que las de D. melanogaster (Tron-

coso et al., 1987). Baker (1971) informa que

las larvas de D. simulans prefieren para ali-

mentarse las capas superiores del medio de

cultivo, pero las larvas de D. melagonaster las

encontró en el interior del sustrato. Hay una

estrecha relación entre la tasa de excavación y

el desarrollo de las conductas de locomoción y

de giros y la forma con éstas dos conductas in-

teractúan entre sí durante el período larval.

La sensibilidad para responder a la luz de

las larvas de D. melanogaster también se

modifica durante el desarrollo. Godoy-Herre-

ra et al., (1993) encontraron que los cambios

en fotorespuesta a la luz blanca están ligados

al desarrollo de ésas larvas y a cambios en la

arquitectura del genotipo que controla ésta

conducta. Entre las 24 y las 48 horas de edad

las larvas prefieren para alimentarse ambientes

oscuros, pero las larvas de 72 y más horas de

desarrollo prefieren ambiente más iluminados.

Un análisis biométrico demostró que la fo-

torespuesta de las larvas jóvenes depende de

un genotipo constituído por genes aditivos,

dominantes y epistáticos, pero la fotorespuesta

de las larvas de 72 y más horas de edad, de-

pende de genes epistáticos. Así, las diferen-

cias fotoconductuales entre larvas jóvenes y

maduras de D. melanogaster, parecen ser pro-

ducto de cambios epigenéticos en los patrones

de expresión génica.

174 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

CONCLUSIONES

La excavación la utilizan las larvas de Droso-

phila para dos funciones: i) mientras se ali-

mentan y 11) durante la pupación. El genotipo

que controla ésta conducta de las larvas de D.

melanogaster, se caracteriza por aditividad y

dominancia. Una complicación es que ésta ar-

quitectura puede modificarse según avanza el

desarrollo larval. La dominancia es típica de

los caracteres importantes para la adecuación

biológica. La dominancia asegura que un

número máximo de genotípos expresen los

fenotipos favorecidos por la selección. Una

de las principales características de las con-

ductas larvales de Drosophila es cambiar con

el desarrollo. Muchos de éstos cambios refle-

jan cambios epigenéticos en los patrones de

expresión génica. Ellos parecen representar

adaptaciones a los ambientes a los cuales debe

ajustarse la larva en diferentes períodos de su

vida.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo fue apoyado por los subsidios de

FONDECYT 1275-91 y D.T.I. Universidad de

Chile B-2309-9155.

Este trabajo está dedicado a Rosita Herrera

Sepulveda y Raúl Godoy Osses.

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XV CONGRESO NACIONAL DE ENTOMOLOGIA

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 175-179

SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA-UNIV. AUSTRAL DE CHILE

VALDIVIA - 1993

ARQUITECTURA GENETICA Y ADECUACION BIOLOGICA

DE LA OVIPOSICION AGREGADA EN DROSOPHILA MELANOGASTER

GLADYS RuIz-DUBREUIL!

RESUMEN

Las hembras de Drosophila exhiben oviposición agregada. Para determinar si esta conducta está

bajo control genético, se realizaron diferentes análisis, los cuales indicaron: que la oviposición

agregada es una propiedad del genotipo; que posee una base poligénica aditiva, en que la mayoría de

los genes que la determinan se encuentran en los cromosomas Il y III; que hay genes con efectos de

dominancia para alta intensidad de agregación y que existe además un significativo efecto materno.

En relación al valor adaptativo de esta conducta, se pudo concluir que las hembras más gregarias

poseerían un mayor valor adaptativo, puesto que poseen una mayor longevidad y fertilidad que las

menos agregadas, incrementando así la probabilidad de transmitir esta característica a sus

descendientes.

ABSTRACT

Drosophila females exhibit gragarious oviposition. Different analyses were designed to probe

wheter this behaviour is genetically determined. The results indicated: that aggregated oviposition is

a property of the genotype; that this behaviour has an additive polygenic basis; that these genes are

distributed over chromosomes II and III; that there are genes with dominant effects for high

aggregation; and that a maternal effect is also present.

In relation to the components fitness correlated to oviposition, the Drosophila, showing more

gregarius behaviour would have a superior fitness value fitness, as they present more longevity and

fertility, thus increasing the probability of transmit this characteristic to the progeny.

INTRODUCCION

La agregación intraespecífica de huevos, lar-

vas y adultos está suficientemente documen-

tada en muchas especies de insectos que usan

un recurso parche y efímero. Tales agregacio-

nes se han considerado importantes por el rol

que juegan en la biología de las especies, con-

duciendo a un aumento de la probabilidad de

sobrevida del grupo y de cada uno de los que

lo forman. Entre ellos se puede citar, la mejor

explotación del recurso espacio y alimento, la

Instituto de Ecología y Evolución, Facultad de Cien-

cias, Universidad Austral de Chile, Casilla 567, Valdivia -

Chile.

(Recibido: 5 de mayo de 1994. Aceptado: 13 de Julio

de 1994)

capacidad tampón frente a compuestos tóxi-

cos, la protección frente a climas desfavora-

bles o a depredadores, la facilitación social y

la estimulación de apareamientos (Dowood y

Strickberger 1969; Linsley y Gazuer 1972;

Wratten 1974; Treisman 1975; Budnik y

Brncic 1975; Gillet et al. 1979; Deneuborg et

al., 1990, Ives 1991 y Jaenike et al., 1992).

Experimentos en laboratorio (del Solar y

Palomino 1966, Atkinson 1983, Chess y

Ringo 1985) y en terreno (Brncic y Valente

1978, Brncic 1988), han puesto en evidencia

que la mayoría de las hembras del género

Drosophila tienden a ovipositar en forma

agregada. Estas hembras, colocan un huevo a

la vez (Kambysellis et al. 1980) y prefieren

hacerlo en areas donde otras hembras han

ovipositado previamente, formando así grupos

de huevos con diferentes densidades.

176 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Existen numerosos estudios que han anali-

zado los diferentes factores ambientales que

afectan la expresión de este rasgo. Entre estos

factores se mencionan las condiciones del sus-

trato (Takamura 1984, Ruiz et al. 1993),

humedad (Sameoto y Muller 1966), densidad

de hembras (Barker 1973), temperatura (Fo-

gelman 1979), iluminación y fotoperíodo

(Gruwez et al. 1972, Seiger y Khamus 1987) y

sustancias químicas tales como etanol y

metanol (Gelfand y MacDonald 1980).

Dada la importancia que tiene la oviposi-

ción agregada, en la viabilidad de la progenie

(Carson 1971, Stamp 1980), al aumentar la

probabilidad de sobrevida de sus descendien-

tes y el hecho de que ésta se observe también

en experimentos de laboratorio, donde las con-

diciones ambientales permanecen constantes y

homogéneas, nos interesó conocer su base

hereditaria y su implicancia en algunos com-

ponentes de la adecuación biológica; objetivo

de esta contribución.

ANALISIS GENETICO

Teniendo presente que la selección permite el

análisis genético conductual de un rasgo que

presenta gran variabilidad fenotípica, el

primer paso de este estudio fue realizar un ex-

perimento de selección divirgente para alta y

baja intensidad de agregación en la oviposi-

ción de D. melanogaster.

La respuesta fue bidireccional, asimétrica e

¡regularmente variable. Además la línea de

alta intensidad de agregación tuvo una

respuesta más rápida y fluctuante que la línea

opuesta. En consecuencia, dado que fue posi-

ble cambiar la distribución de la expresión

fenotípica a través de cruzamientos selectivos

entre individuos que mostraban un mismo

fenotipo, se pudo concluir que la oviposición

agregada en D. melanogaster tiene una base

hereditaria (Ruiz 1982, Ruiz y del Solar

1986).

El disponer de poblaciones con expresión

fenotípica deseada, permite por otra parte rea-

lizar la hibridación de las líneas seleccionadas.

Estos experimentos, se realizaron en dos gene-

raciones diferentes (92 y 99) y permitieron in-

ferir la intervención de varios loci en la gran

variabilidad fenotípica existente entre los indi-

viduos altamente gregarios y no gregarios;

además de revelar un efecto de dominancia

para alta agregación de huevos (Ruiz y del So-

lar 1991).

Finalmente, los cruzamientos dialélicos,

que consiste en cruzar una muestra fija de

líneas endogámicas en todas las combinacio-

nes posibles, permitió al cabo de sólo una ge-

neración subdividir la varianza genética del

caracter en estudio. Además de inferir el tipo

de selección natural que ha estado actuando

sobre él (Broadhurst y Jinks 1986).

Las cepas seleccionadas para este análisis

fueron: ojos Bar, alas taxi, alas dumpy y

cuerpo negro, cuyas tasas de agregación

evaluadas anteriormente (Ruiz 1992), resul-

taron ser estadísticamente diferentes.

El análisis de la matriz de las 16 Fl pro-

ducidas al cruzar las cuatro cepas en todas sus

combinaciones posibles, según metodología de

Hayman (1954) y Crusio et al. (1984); permi-

tieron confirmar la presencia y preponderancia

de una varianza genética aditiva, como tam-

bién de dominancia. Además se detectó un

significativo efecto materno, posiblemente de-

bido a elementos citoplasmáticos (Ruiz y del

Solar 1993).

Caracteres estrechamente asociados con la

adecuación biológica, generalmente muestran

una significativa dominancia direccional (Bru-

ell 1964). Este hecho, sumado a la amplia

variedad de factores abióticos que influyen en

la selección para oviposición, es consistente

con el punto de vista que la intensidad de

agregación de huevos es una conducta de im-

portancia ecológica para las hembras.

Los recursos explotados por Drosophila

están divididos en parches pequeños, discretos

y efímeros, tales como frutas, flores, hojas

y hongos. Frecuentemente, en estos sitios

coexisten un gran número de especies, cada

una con una clara tendencia para ovipositar en

forma agregada (Shorrocks 1977, Brncic 1987,

Rosewell et al. 1990). Estas agregaciones

pueden ayudar a las larvas en la explotación

de los recursos o protección a los efectos tóxi-

cos de infectación y desecación de huevos

únicos. En ciertas especies del grupo Sopho-

phora y Mesophragmatica, existe una corre-

lación positiva entre densidad de huevos y

viabilidad huevo-adulto. Esta asociación

Ruiz-Dubreuil: Genética de la oviposición agregada en Drosophila melanogaster 177

puede deberse a que cada larva elimina

desechos y secreciones salivales en el sustrato,

ayudando a la movilización del alimento (Bud-

nik et al. 1971, Budnik y Brncic 1975).

Por otra parte, donde exista restricción de

recursos, los fenotipos más gregarios gastarán

menos energía en la búsqueda de sitios

adecuados para la oviposición. Todas estas

serían las posibles razones porla cual la selec-

ción natural ha llevado a que la conducta gre-

garia para la oviposición de Drosophila se

deba a factores dominantes.

Recientemente, Ruiz y Kohler (1993) me-

diante marcadores cromosómicos, llegaron a

determinar que los genes que influyen en esta

conducta están distribuidos en los dos cro-

mosomas autosómicos mayores de Drosophila

melanogaster, cromosomas Il y III.

Por otra parte, es importante mencionar que

los diferentes niveles de oviposición agregada

están asociados a diferencias entre el orde-

namiento espacial que exhiben las hembras.

Registros de la distribución de adultos hem-

bras y machos cada una hora, durante un

período de 12 horas, mostraron que las hem-

bras de la línea de alta agregación para la

oviposición tenían una distribución con-

tagiosa. Por su parte, las hembras de la línea

de baja tienden en la mayor parte del tiempo a

distribuirse al azar, con evidencias ocasionales

de agregación. En cambio los machos de am-

bas líneas se dispersan más bien al azar (Ruiz

et al. 1993). Estos resultados estarían apoyan-

do lo observado por Hofman (1987), quien de-

tectó que las interacciones sociales de los

machos de D. melanogaster involucran con-

ductas de agresión y territorialismo, con-

duciendo a una sobredispersión de ellos.

ADECUACION BIOLOGICA

Si la oviposición agregada es lo más adecuado

para D. melanogaster, cabe preguntarse, ¿qué

pasa con los otros componentes de la

adecuación biológica de las hembras que

ovipositan muy agregadamente versus las que

lo hacen más bien al azar?.

Estudios del período de latencia, duración

de la cópula, fecundidad y longevidad, mues-

tran que las hembras más gregarias son más

longevas (48 días en promedio vs. 40 días), y

a pesar de que su fecundidad (número de

huevos ovipositados en toda su vida) es en

promedio menor (66 huevos por hembra vs.

81), el porcentaje de organismos que llegan al

estado adulto es significativamente superior:

96% vs 711% (Cárdenas et al. 1991).

Por otra parte, un análisis detallado de la

velocidad de desarrollo, registrada cada 12

horas (Ruiz et al. 1992), mostró que los

preadultos derivados de huevos muy agre-

gados, tenían una velocidad de desarrollo

promedio inferior que los de fenotipo opuesto

(13 días vs. 12 días).

Estas correlaciones que se observan dentro

de un mismo grupo de individuos de igual

fenotipo, es posible que se deban a efectos

pleiotrópicos de los genes que determinan alta

o baja intensidad de agregación y/o simple-

mente efectos correlacionados a la selección.

Pero independiente de su origen es evidente

que las hembras que ovipositan más agre-

gadamente, presentarían un valor adaptativo

superior, puesto que su mayor longevidad y

fertilidad le incrementa la probabilidad de

transmitir sus características a sus descendien-

tes.

Finalmente, conviene recordar que para que

haya una respuesta evolutiva frente a la selec-

ción natural, debe existir variabilidad

fenotípica dentro de la población, esta

variación debe tener un componente genético

y además debe haber una selección diferencial

de acuerdo al fenotipo, todo lo cual ha

quedado suficientemente demostrado en el

presente trabajo.

AGRADECIMIENTOS

Este trabajo fue financiado por los proyectos

FONDECYT 1930394 y RS 92-43 de la D.I.D.

de la Universidad Austral de Chile.

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Acne

NOTAS CIENTIFICAS

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 181-183

PRIMER REGISTRO DEL ESCOLITIDO DEL OLMO, SCOLYTUS MULTISTRIATUS

(MARSHAM) (COLEOPTERA:SCOLYTIDAE), EN CHILE.

MARCOS A. BEÉCHE C.' y RAQUEL S. MUÑOZ e

RESUMEN

Se señala por primera vez la presencia en Chile del escolítido del olmo Scolytus multistriatus

(Marsham). Se indican los caracteres morfológicos externos del adulto, la biología de la especie y la

sintomatología del daño, según lo señalado en la literatura consultada.

ABSTRACT

The presence of Scolytus multistriatus (Marsham) is recorded from Chile for the first time. External

adult characters, biology and symptom of its damage are indicated, as cited in the literature

consulted.

INTRODUCCION

El olmo (Ulmus sp.) es una de la especies

forestales más cultivadas en la zona central de

Chile, constituyendo un importante elemento

escénico vegetacional.

La utilización de este árbol ornamental,

originario del Hemisferio Norte, se remonta a

la época del Imperio Romano, período en el

cual llegó a ser considerado en algunas áreas

como un símbolo del avance de dicho imperio.

Sin embargo, su cultivo tanto en Europa como

en América del Norte, se ha visto significati-

vamente limitado en el presente siglo, como

consecuencia de una enfermedad que le afecta,

conocida como la grafiosis del olmo, la cual es

provocada por el hongo Ceratocystis ulmi

(Buisan), siendo uno de sus principales vec-

tores el escolítido del olmo. Scolytus multis-

triatus (Marsham).

¡Servicio Agrícola y Ganadero, Av. Bulnes N* 140,

Santiago-Chile

“Servicio Agrícola y Ganadero, Av. Alonso Ovalle N*

1329, Santiago-Chile

(Recibido: 22 de abril de 1993. Aceptado: 5 de octubre

de 1993)

Este insecto, originario de Europa y parte

de Asia, fue accidentalmente introducido a

Estados Unidos de Norteamérica y Canadá,

donde ha provocado una destructiva acción en

los olmedales de numerosas localidades

(USDA, 1980). Su actual distribución geo-

gráfica abarca además Argelia y Egipto (Com-

monwealth Institute of Entomology, 1975) y

Australia (Commonwealth of Australia, 1983),

donde fue reportado por primera vez en 1974.

El presente corresponde al primer registro de

S. multistriatus para América del Sur.

MATERIALES Y METODOS

A partir del mes de Junio de 1992 y hasta Fe-

brero de 1993, fueron prospectadas cortinas

cortavientos y ejemplares aislados de olmo

(Ulmus sp.), en la Región Metropolitana y V

Región de Chile. En aquellos árboles que evi-

denciaron posibles signos de ataque por S.

multistriatus, tales como follaje seco y per-

foraciones circulares sobre la corteza, fueron

extraídas secciones de la corteza, con el

propósito de observar la presencia de estados

inmaduros y adultos del insecto.

182 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

RESULTADOS

Se reportó la presencia de adultos muertos de

Scolytus multistriatus (Marsham) en las locali-

dades de Pudahuel, Talagante y Las Condes

(Región Metropolitana), durante los meses de

Junio y Julio de 1992. Posteriormente fueron

identificados adultos y larvas vivas de esta

especie, provenientes de la localidad de

Melipilla (Región Metropolitana), durante el

mes de Febrero de 1993. No fue reportada la

presencia del insecto en la V Región.

Descripción del adulto: De acuerdo a lo

señalado por Wood (1982), este insecto

corresponde a un pequeño escarabajo de 1,9

hasta 3,1 milímetros de longitud y 2,2 veces

más largo que ancho. Su coloración general

es rojizo oscuro, pudiendo presentar los élitros

un tono algo más claro que el resto de su

cuerpo (Fig. 1).

Macho con frente cóncava entre los ojos y

del epístoma al vertex, con cerdas largas y

moderadamente abundantes; hembra con

frente convexa y con cerdas cortas y ralas.

Pronoto subcuadrangular, glabro, de super-

ficie brillante con puntuación profunda mode-

radamente densa.

Figura 1: Adulto macho de Scolytus multistriatus

Elitros 1,3 veces más largo que ancho, con

estrías uniseriadas de punteadura profunda y

estrecha. Superficie glabra a excepción de

unas pocas setas en la declividad elitral.

Abdomen con esterno 2 subvertical, con

una espina medial de forma subcilíndrica, ubi-

cada en el margen posterior de este segmento.

En la zona lateral del margen posterior de los

segmentos 2-4 presenta tubérculos pequeños y

finos.

Biología y daños: Wood (1982) señala que la

emergencia de los adultos de S. multistriatus

ocurre durante la primavera. Los adultos

vuelan hacia las ramillas de los olmos sanos,

en las cuales se alimentan del floema e inocu-

lan el hongo causante de la grafiosis del olmo.

La hembra escoge para su postura, olmos

enfermos o caidos, en los cuales se introduce

al floema, mediante una perforación circular

de la corteza. A nivel subcortical, forma una

galería longitudinal, paralela al eje longitudi-

nal del árbol, a lo largo de la cual deposita sus

huevos en ambos costados, en pequeñas

celdillas.

Las larvas emergidas, forman galerías ra-

diales desde la galería de postura, las que

siguen un curso más o menos definido. La pu-

pación ocurre en la corteza.

Se ha observado que esta especie puede pre-

sentar 1 a 3 generaciones al año, según las

condiciones climáticas del área.

DISCUSION

La presencia de S. multistriatus en Chile

puede provocar un daño visual de considera-

ción, en especial en los olmedales ubicados en

los parques y jardines de las áreas urbanas y

en las cortinas cortavientos de los sectores

rurales. No obstante, los efectos que este in-

secto llegue a provocar dependerán en gran

medida, de la presencia del hongo causante de

la grafiosis del olmo (C. ulmi), asociado a las

poblaciones del insecto presentes en el país.

Debido a lo anterior, se considera necesario

la ejecución de estudios destinados a estable-

cer la presencia de C. ulmi en Chile, y de ser

así, determinar su grado de patogenicidad. En

forma complementaria a lo anterior, será nece-

sario determinar el ciclo biológico de la plaga

Beéche y Muñoz: Registro de Scolytus multistriatus en Chile 183

en Chile y su distribución geográfica, más allá

de las regiones prospectadas a la fecha. Estos

antecedentes serán necesarios en la ejecución

de posibles actividades de control.

Difícilmente la presencia de S. multistriatus

en Chile, provocaría un impacto negativo en

las exportaciones forestales, dado que este in-

secto no se asocia a las mercaderías forestales

exportadas normalmente por nuestro país.

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ECHINOPSIS CHILENSIS (FRIEDRICH ET ROWLAND): AN ENDEMIC BREEDING SITE

FOR DROSOPHILA PAVANI BRNCIC 1957.

GERMÁN MANRÍQUEZ' AND MORITZ BENADO!?

ABSTRACT

The endemic species D. pavani was bred from the fermenting tissues of the columnar cactus E.

chilensis, collected near Til-Til (33%05” S, 7054” W). This is the first time that an endemic host is

described for the species.

RESUMEN

Se obtuvo individuos de D. pavani de los tejidos fermentados del cactus columnar E. chilensis

hallados en las cercanías de Til-Til (33%05”S, 70954” W). Esta es la primera vez que se describe un

hospedero endémico para D. pavani.

INTRODUCTION

In Drosophila, oviposition choice es related to

the host's trophic and physico-chemical char-

acteristics (Barker, 1990), and this is not usu-

ally considered when collecting flies in the

field. The standard fermenting bait may seri-

ously bias the samples taken from a local com-

munity.

D. pavani is widespread in Chile, ranging

from Copiapó (27%20"S) to Valdivia

(3952”S). The fly is endemic and belongs to

the D. mesophragmatica group in the subge-

nus Drosophila (Brncic 1957, 1987a) . Al-

though easily collected with fermenting

banana baits in a variety of different wild

habitats, and in several ones associated with

man such as gardens and orchards (Brncic,

1987b), little is known about its breeding

sites.

¡Departamento de Biología Celular y Genética, Facul-

tad de Medicina, Universidad de Chile, Independencia

1027, Santiago de Chile.

“Departamento de Estudios Ambientales, Universidad

Simón Bolívar, Caracas, Venezuela.

(Recibido: 29 noviembre de 1993. Aceptado: 14 de

julio de 1994).

In this paper, we identify a natural endemic

host for D. pavanti, the columnar cactus E.

chilensis; 1ts fermenting tissues are used in the

field as breeding sites by the fly.

MATERIAL AND METHODS

We sampled a locality 50 km to the NW of

Santiago, near Til-Til (33%05” S, 70%54” W) .

The surrounding mountains support abundant

populations of the columnar cactus E. chilen-

sis, as well as other Cactaceae and xerophytic

shrubs. Fermenting tissues ("rot-pockets") of

E. chilensis were collected on July, 1992,

taken to the laboratory, and transferred into

population cages kept at room temperature.

Adults were allowed to emerge and isofemale

lines were set up to establish their specific

status. Fermenting baits of kiwi and banana

were set from 11:00 to 18:00 with no results.

The lines were crossed to tester strains for the

D. mesophragmatica group, v.z., D. pavani

(La Florida, Santiago de Chile), D. pavani (La

Serena, Chile), D. gaucha (Jaeger é Salzano,

1953) (Tainhas, Brazil), D. mesophragmatica

(Brncic 6 Koref-Santibañez, 1957) (La Paz,

Bolivia) and D. mesophragmatica (Colombia).

We run 2 series of crosses, with 3 repli-

186 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

cates/series. A cross was considered suceess-

ful when an abundant F2 was obtained. The

flies were identified with keys published by

Brncic (1957, 1987a). We also checked the

polythenic chromosomes of hybrids between

the emerged flies and D. gaucha (Tainhas). E.

chilensis was identified with the key published

by Hoffmann (1989).

RESULTS AND DISCUSSION

A total of 38 females and 43 males emerged

from the rotpockets in the laboratory, that

were provisionally identified as D. pavani In

Table 1, we show the results of the crosses

with the tester strains, only the crosses with

both D. pavani strains gave abundant F?2's.

The chromosome analysis confirmed the spe-

cific status of the emerged flies.

In Chile, an association between endemic

cacti and endemic Drosophila was reported

for D. atacamensis (Brncic, 1987) and

Copiapoa cinerea Philippi (Brncic, 1987b).

Such associations have been studied in detail,

among others, for the Sonoran Desert (Heed éz

Mangan, 1986) and for Northern South Amer-

ica (Benado et al., 1984; Benado, 1989). In

the latter region, the most efficient collecting

method is by rot-pocket sampling, rather than

by using standard baits (Benado, unpub-

lished). Our results show that in Central Chile

the sampling of fermenting tissues is also an

efficient method, and that the endemic E.

chilensis is not an ocassional host for D.

pavani since emergences were abundant.

However, our records indicate that Cactaceae

rot in Chile mainly in Winter. This opens the

possibility that D. pavani may shift hosts sea-

sonally.

ACKNOWLEDGEMENTS

Universidad de Chile (Vicerrectoría

Académica y Estudiantil, Departamento de

Postgrado y Postítulo, Beca N” 042-93) par-

tially funded this project. We thank Dr.

Danko Brncic for his advice concerning the bi-

ology and systematics of D. pavani. We also

thank Dr. Myriam Budnik for the use of com-

puting facilities. M.B. was an Invited Profes-

sor at the Universidad de Chile sponsored by

the O.A.S.

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TABLE 1

CROSSES BETWEEN INDIVIDUALS THAT EMERGED FROM E. CHILENSIS WITH TESTER-STRAINS FROM THE

D. MESOPHRAGMATICA GROUP.

mesophragmatica

g£roup

strains

D. pavani La Florida, La|D. gaucha Tainhas D.mesophragmatica La Paz,

Serena Colombia

dead embryos

Drosophila sp. fertile F2

(Til-Til)

COMENTARIOS BIBLIOGRAFICOS

GAGNE, RAYMOND J. 1994. The gall midges of the neo-

tropical region. Cornell University Press, 352 pp.

El libro en cuestión, escrito por una autoridad indiscutida

en la materia, es una reciente y condensada revisión del

conocimiento de la familia Cecidomyiidae (Diptera) en la

Región Neotropical. Esta familia está directamente aso-

ciada a la formación de cecidios, de donde deriva su nom-

bre común de "mosquitos formadores de agallas o

cecidios" (Gall Midges), si bien no todas sus especies

tienen este particular tipo de vida

El autor hace su entrega mediante el siguiente

esquema:

- Una muy somera introducción al tema.

- Una breve historia del estudio de la familia en la región

neotropical, tanto desde el punto de vista taxonómico

como de los cecidios que origina. En este capítulo des-

taca los aportes de algunos científicos como J-J. Kief-

fer, E.H. Riibsaamen, J. da Silva Tavares, E.P. Felt,

M.T. Cook, P. Jórgensen, J. Bréthes, C.A.V. Houard y

E. Móhn, etc.

- Un breve capítulo sobre anatomía externa de los

cecidómidos desde huevo a imago.

- Un breve capítulo dedicado a aspectos biológicos de la

familia, destacando, entre otros: hábitos alimentarios de

las larvas, pedogénesis, diapausa, ovoposición, alimen-

tación del adulto, duración del ciclo de vida, mortali-

dad.

- Enel capítulo cuarto entrega instrucciones básicas para

la colecta y estudio posterior de los especímenes.

- Los capítulos 5 y 6 configuran la parte fundamental del

libro. En el capítulo 5, denominado "Sinopsis de los

Cecidomyiidae neotropicales”, entrega claves de Subfa-

milias, clave de supertribus de Cecidomyiinae y claves

de tribus y géneros de algunas de estas. A continuación

de cada género se presenta la lista actualizada de las

especies hoy en día reconocidas, indicándose su

hospedero. La actualización realizada por el autor im-

plica la creación de nuevas tribus, géneros y especies,

reemplazo de nominaciones, restitución de géneros y

especies, sinonimias genéricas y específicas y nuevas

combinaciones.

- El capítulo 6 se refiere a los hospederos y a los cecidios

formados por Cecidomyiidae en la región neortropical.

La entrega de la información se hace mediante una

clave, ordenada alfabéticamente por familias y géneros

de hospederos. Dentro de cada género se menciona el

tipo de cecidio, la especie de cecidómido huesped, la

especie hospedera, su distribución y la referencia

bibliográfica principal.

- Termina el texto con un pequeño glosario.

En conjunto, el libro es una excelente compilación del

conocimiento actual de la familia Cecidomyiidae y de su

relación con las plantas (cecidios) de la Región Neotropi-

cal. Su presentación le confiere la calidad de guía prác-

tica de identificación de las especies de cecidómidos así

como de los cecidios por ellas formados, lo que la con-

vierte en un excelente instrumento para investigaciones

futuras.

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 187-190

Finalmente, el libro es un llamado a intensificar el es-

tudio de la relación Cecidomyiidae-Cecidio, ya que en

más de 200 casos de cecidios adjudicados a estos mosqui-

tos la especie del díptero no esta identificada (sólo se

menciona cecidómio) y en una cincuentena de casos sólo

se indica el nombre genérico.

FRANCISCO SAIZ

Ecología, Univ. Católica de Valparaíso

ARANEAE

GOLOBOFF, P.A. 1993. A reanalysis of mygalomorph spi-

der families (Araneae). American Museum Novitates,

(3056): 1-32.

Se efectúa una revisión de la clasificación superior de My-

galomorphae, implicando un nuevo ordenamiento de taxa

a nivel de superfamilias y determinándose una composi-

ción heterogenea en algunos otros.

GOLOBOFF, P.A. 1994. Migoidea de Chile, nuevas o poco

conocidas (Aranaea:Mygalomorphae). Revista de la

Sociedad Entomológica Argentina, 53:65-74.

Se describen dos nuevas especies de Actinopodidae para

Chile (Plesiolena ¡jorgelina y Missulena tussulena),

tratando además a P. bonneti (Zapfe) y a Calathotarsus

pihuychen Goloboff (Migidae).

PLATNICK, N.I. 1994. A revision of the spider genus

Caponina (Araneae, Caponiidae). American Museum

Novitates, (3100): 1 - 15.

Describe para Chile una nueva especie, Caponina chilen-

sis; respecto a la otra especie previamente adscrita a este

género (C. leopoldi Zapfe), establece que no es

congenérica con la especie tipo del género.

COLEOPTERA

ALVARENGA, M. 1994. Catálogo dos Erotylidae (Coleop-

tera) neotropicais. Revista Brasileira de Zoologia,

111): 1-175.

De acuerdo a este catálago, se encuentran presentes en

Chile Ischyrus bifasciatus Guérin, Mycotretus chilensis

Crotch, Triplax azureipennis Guérin, 7. bicolor Guérin,

Neoxestus chilensis Crotch e Iphiclus klugi Lacordaire.

BRENDELL, M.J.D.; M. DACCORDI é S.L. SHUTE.

1993. On the systematic position of the genus Brachy-

helops Fairmaire (Coleoptera Chrysomelidae). Bolle-

tino Museo Civico di Storia Naturale di Verona, 17:

265-276. (1991).

Se traspasa formalmente a Brachyhelops, con su única

especie incluída B. hahni Fairmaire que es propia del ex-

tremo sur de Chile, desde Tenebrionidae a Chrysomelidae;

dentro de esta última familia es ubicado en Chrysomelinae

188 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

(Chrysomelini: Entomoscelina) y relacionada con elemen-

tos de Sudáfrica y Australia.

GOLBACH, R.; M. GUZMAN DE TOMÉ y S. ARANDA. 1991.

La subfamilia Ctenicerinae (Col. Elateridae) de la

región neotropical y nuevas citas para la República Ar-

gentina. Acta Zoologica Lilloana 40(1): 89-94.

Tratan a Ctenicera philippi (Fleutiaux), nueva combi-

nación y a Somomecus parallelus Solier; ambas especies

presentes también en Chile. Cita además a C. canalicu-

lata Fairmaire, distribuída en Argentina y Chile.

JEREZ R., V. 1991. El género Dictyneis Baly, 1865

(Coleoptera: Chrysomelidae: Eumolpinae). Taxo-

nomía, distribución geográfica y descripción de nuevas

especies. Gayana, Zoología, 55(1): 31-52.

Se efectúa una revisión del género Dictyneis, endémico de

Chile describiéndose 3 nuevas especies; este género queda

representado por 9 especies exclusivas de nuestro país.

Se presentan claves para identificación de machos y hem-

bras.

KUKALOVÁ-PECK, J. 62 J.F. LAWRENCE. 1993. Evolution

of the hind wing in Coleoptera. The Canadian Ento-

mologist, 125: 181-258.

Se examinan los principales caracteres del ala posterior

(nervadura, articulación y plegamiento), en representantes

de más de 100 familias de Coleoptera; esta actividad es

combinada con el análisis de antecedentes reportados en

la literatura. Los autores analizan desde esta perspectiva,

las relaciones de parentesco entre los 4 subordenes actual-

mente reconocidos, definiendo dos linajes dentro de

Polyphaga.

KuscHEL, G. 1992. Reappraisal of the Baltic Amber Cur-

culionoidea described by E. Voss. Mitteilungen des

Geologisch-Paláontologisches Institut Universitát

Hamburg, 73: 191-215.

En un Apéndice a este trabajo (páginas 202 a 207), el

autor transfiere a Caenominurus, con su única especie C.

topali Voss, desde Attelabidae a Brentidae; dentro de esta

última familia describe además a Chilecar,

monoespecífico, con C. pilgerodendri. Ambas especies se

encuentran asociadas a Cupressaceae, la primera de ellas

presente en Chile y Argentina y la segunda hasta el mo-

mento exclusiva a Chile. Ambos géneros son relacionados

con el género australiano Car.

LANTERI, A.A. 1993. La partenogénesis geográfica y la si-

nonimia de Asynonychus cervinus (Boheman) y A. god-

manni Crotch (Coleoptera: Curculionidae) Revista de

la Sociedad Entomológica Argentina, 52: 100.

Se restablece como nombre válido a Asynonychus cervi-

nus (Boheman), correspondiendo el nombre A. godmanni

(Crotch) a la forma partenogenética de ella.

LANTERI, A.A. 1994. Systematic study and cladistic

analysis of the genus Aramigus Horn (Coleoptera: Cur-

culionidae). Transactions of the American Entomo-

logical Society, 120(2): 113-144.

De las siete especies que integran este género, sólo

Aramigus tessellatus se presenta en Chile; es un elemento

propio de Brasil, Uruguay y Argentina que ha sido intro-

ducido en Estados Unidos de Norteamérica y México,

además de nuestro país. En este aporte se puede encontrar

la sinonimia completa, de esta especie, con formas

partenogenéticas y de gran variabilidad.

LESCHEN, R.A.B. 6 J.F. LAWRENCE. 1991. Fern sporo-

phagy in Coleoptera from the Juan Fernandez Islands,

Chile, with descriptions of two new genera in Crypto-

phagidae and Mycetophagidae. Systematic Entomolo-

gy, 16: 329-352.

Dentro de Cryptophagidae describen al nuevo género

Cryptoyhelypterus que incluye 5 especies, 2 de ellas

nuevas entidades, que se alimentarían de esporas de

helechos; para Mycetophagidae se propone el nuevo

género Filicivora, para incluir en él a Mycetophagus

chilensis Phil. 82 Phil., con régimen alimenticio también

basado en esporas de helechos. Esta última situación es

comprobada además en el caso de Opisolia lenis Jordan

(Anthribidae).

MORRONE, J.J. 1994. Clarification of the taxonomic status

of species formerly placed in Listroderes Schoenherr

(Coleoptera: Curculionidae), with the description of a

new genus. American Maseum Novitates, (3093): 1-11

El autor presenta la continuación de su tarea de desmem-

bramiento del género Listroderes; en lo relativo a especies

presentes en Chile transfiere a Listroderes griseus Guérin

al género Acrostomus y a L. philippi Germain, al género

Germainiellus. En este aporte presenta además un listado

de especies, de acuerdo al ordenemiento actual de

géneros.

MORRONE, J.J. 1994. Systematics, cladistics, and bio-

geography of the andean weevil genera Macrostyphlus,

Adioristidius, Puranis, and Amathynetoides, new genus

(Coleoptera: Curculionidae). American Museum Novi-

tates, (3104): 1-63.

Efectúa una revisión de las especies previamente asig-

nadas a Macrostyphlus; como fruto de su investigación

describe un nuevo género, restablece otras dos entidades

genéricas y describe 26 nuevas especies, En lo relativo a

Chile, se encuentran representados los géneros Adioris-

tidius Voss (con 4 especies, 3 de ellas nuevas), Amathyne-

toides Morrone (con 3 especies) y Puranius Germain (con

15 especies, 7 de ellas nuevas).

PEÑA G., L.E. 1991. El género Adelium Kirby en América

(Coleoptera-Tenebrionidae). Revista de la Sociedad

Entomológica Argentina, 49: 79-84.

Se entrega una clave para el reconocimiento de las espe-

cies de Adelium y las descripciones de tres nuevas espe-

cies propias de Chile: A. montemiliense (Malleco y Talca),

Comentarios Bibliográficos 189

A. breve (Cautín) y A. monticola (Cordillera de la Costa

en el límite entre Santiago y O'Higgins).

PACcE, R. 1992. Kaweshkarusa daccordii n. gen. e n. sp.

del Cile (Coleoptera, Staphylinidae) (CII Contributo

alla conoscenza delle Aleocharinae). Bollettino del

Museo Civico di Storia Naturale di Verona, 16: 357-

364. (1989)

Este nuevo género de Aleocharinae, propio del extremo

sur de Chile, es afín a Spanioda;, sólo incluye a la nueva

especie detallada en el título y cuyos representantes son

ápteros.

PoLLock, D.A. 1992, Taxonomic status of Pythoplesius

Kolbe 1907, a junior synonym of Cycloderus Solier

1851, and lectotype designation for P. michaelseni

Kolbe (Coleoptera: Pythidae: Pilipalpinae). The

Coleopterists Bulletin, 46(3): 239-242.

El autor establece que Pythoplesius Kolbe es un sinónimo

posterior de Cycloderus Solier, del mismo modo que P.

michaelseni Kolbe lo es de C. magellanicus Solier, espe-

cie propia del extremo sur de Ghile.

RoIG-JUÑENT. S. 1993. Revisión del género Barypus De-

jean, 1828 (Coleoptera: Carabidae). Parte III. Revista

de la Sociedad Entomológica Argentina, 51: 1-25.

En este aporte entrega claves para el reconocimiento de

subgéneros y especies adscritas a Barypus; en ellas se in-

cluyen las cinco especies que se presentan en Chile, dis-

tribuídas de la región central el extremo sur.

HYMENOPTERA

BoHarT, R.M. 1992. The genus Oxybelus in Chile

(Hymenoptera: Sphecidae, Crabroninae). Journal of

Hymenoptera Research, 1(1): 157-163.

Efectúa una revisión del género Oxybelus, presenta des-

cripciones de las 9 especies que se presentan en Chile (4

de ellas nuevas entidades), 8 de las cuales son exclusivas

hasta este momento a nuestro territorio; entrega además

una clave para su reconocimiento y efectúa una nueva si-

nonimia.

GENISE, J.F. 82 L.S. KimseY. 1993. Revision of the South

American thynnine genus Elaphroptera Guérin-

Méneville (Hymenoptera: Tiphiidae). Journal of

Hymenoptera Research, 2(1): 195-220.

En lo relativo a Chile describen una nueva especie y pro-

ponen 3 nuevas sinonimias a nivel específico; de las 20

especies incluídas en Elaphroptera, 11 se presentan en el

territorio nacional, 4 de ellas en forma exclusiva y las res-

tantes compartidas con Argentina en el área sur de su dis-

tribución. Presentan una clave para el reconocimiento de

machos y hembras de las especies incluídas. Para el caso

de otra especie descrita para Chile, A. tridens Spinola, su

identidad permanece en duda.

KimseEY, L.S. 1991. Revision of the South American wasp

genus Aelurus (Hymenoptera: Tiphiidae: Thynninae).

Systematic Entomology, 16: 223-237.

Respecto a la la representación de Aelurus en Chile, queda

conformada por 4especies, 1 de ellas nueva, con 3 de

ellas exclusivas a nuestro país y la restante compartida

con Argentina; propone además 4 nuevas sinonimias

específicas. Se presenta una clave para el reconocimiento

de las especies incluídas y un cladograma que muestra las

relaciones filogenéticas entre ellas.

KimseY, L.S. 1992. Phylogenetic relations among the

South American thynnine tiphiid wasps (Hymenop-

tera). Systematic Entomology, 17: 133-144.

Se efectúa un análisis de las relaciones de parentesco en-

tre los géneros sudamericanos de Thynninae, presentando

un cladograma que muestra las relaciones entre ellos; se

entrega además una clave para el reconocimiento de estos.

En cuanto a la representación en Chile, se sinonimiza

Anodontyra imverrupta Durán, 1941 con A. tricolor West-

wood, 1835.

MASNER, L. € L. HUGGERT. 1989. World review and

keys to the genera of the subfamily Inostemmatinae

with reassignment of the taxa to the Platygastrinae and

Sceliotrachelinae (Hymenoptera: Platygastridae),

Memoirs of the Entomological Society of Canada,

(147): 1-11, 1-214 (más un cuadro anexo).

Inostemmatinae es considerada una agrupación simple-

siomórfica, reasignando los géneros incluídos en ella, y

describen 20 géneros nuevos y 18 nuevas especies. En lo

que respecta a taxa presentes en Chile describen 4 nuevos

géneros (monoespecíficos) y sus respectivas especies;

Platygastrinae queda representado en Chile por 8 géneros

y Sceliotrachelinae por 5, la presencia en nuestro país de

algunos de estos géneros (3 en el primer caso y 2 en el

segundo) se basa en especies aún no descritas. Presentan

una clave para el reconocimiento de géneros (a nivel

múndial) entregando además los antecedentes conocidos

(biológicos, taxonómicos, de distribución, colecta y

preparación) y figuras explicativas (más de 250 dibujos y

microfotografías).

OimMI, M. 1994. Descrizione di Gonatopus vidanol,

nuova specie del Cile, e del maschio di Gonatopus

lacualis Olmi (Hymenoptera: Dryinidae). Memorie

della Societá Entomologica Italiana, 72: 327-330

(1993)

Se describe una nueva especie propia de Chile, Gonatopus

vidanoi Olmi y se amplían los antecedentes respecto de G.

lacualis Olmi, ambas especies han sido obtenidas a partir

de ejemplares parasitados de Amplicephalus glaucus. (Ci-

cadellidae).

ROZEN, J.G. jr. 1993. Phylogenetic relationships of

Euherbstia with other short-tongued bees (Hymenop-

tera: Apoidea). American Museum Novitates, (3060):

1-17.

190 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Se detallan aspectos de sitio de nidificación, nidos, pro-

visión de alimento, desarrollo y actividad estacional y

diurna de inmaduros de la especie chilena Euherbstia ex-

cellens Friese (Andrenidae); se describe la larva madura y

se entrega un cladograma que muestra las relaciones filo-

genéticas (basado en caracteres larvales) con otros taxa re-

lacionados.

Ruz, L. £ J.G. ROZEN. 1993. South American panurgine

bees (Apoidea: Andrenidae: Panurginae), part I. Bio-

logy, mature larva, and description of a new genus and

species. American Museum Novitates, (3057): 1-12.

El primer autor describe un nuevo género, Parasarus, y su

única especie incluída P. atacamensis la cual es exclusiva

de la región nor-central de Chile. Entregan antecedentes

biológicos y describen la larva madura.

SMITH, D.R. 1990. A synopsis of the sawflies (Hymenop-

tera, Symphyta) of America south of the United

States: Pergidae. Revista Brasileira de Entomologia,

34(1): 7-200.

El autor propone una nueva entidad de nivel subfamilia,

describe 7 nuevos géneros y 87 nuevas especies, propone

35 nuevas combinaciones y efectúa 14 nuevas sinonimias.

En lo que se refiere a Chile, describe dos nuevos géneros,

Ecopatus (monoespecífico) y Tequus, y las nuevos espe-

cies E. penai, Giladeus penai y G. tuxius; la repre-

sentación chilena de esta familia queda conformada por

los géneros Cerospastus (1 sp.), Ecopatus (1 sp.), Cono-

coxa (2 spp.), Lycosceles (1 sp.), Nithulea (1 sp.), Gi-

ladeus (3 spp.) y Tequus (1 sp.). Es un aporte

complementario de la primera parte de esta sinopsis

(Smith, 1988. Systematic Entomology, 13: 205-261).

SMITH, D.R. 1992. A synopsis of the sawflies (Hymenop-

tera: Symphyta) of the America south of the United

States: Argidae. Memoirs of the American Entomo-

logical Society, (39): 1 - 201.

En cuanto a Chile, la familia Argidae está representada

sólo por la nueva especie Brachyphatnus vescus, propia de

las regiones de Atacama y Coquimbo; este aporte es la

continuación del trabajo mas arriba citado.

GIELIS, C. 1991. A taxonomic review of the Pterophori-

dae (Lepidoptera) from Argentina and Chile. Zoolo-

gische Verhandelingen, (269): 1-164.

Se efectúa una revisión de los taxa de Pterophoridae pre-

sentes en el cono Sur de América, reuniendo la informa-

ción dispersa de este peculiar grupo. Se tratan 12 géneros

(3 de ellos nuevos) y 51 especies (29 nuevas). En Chile

está representada Platyptiliinae, con 7 géneros (1 de ellos

nuevo) y 24 especies, además de Pterophorinae con dos

géneros y 9 especies; 19 de estas especies constituyen

nuevas entidades.

ODONATA

JURZITZA, G, 1990. Úber Aeshna (Neureclipa) diffinis

Rambur 1842, Ae. (N.) absoluta (Calvert 1952) und Ae.

(N.) bonariensis Rambur 1842 (Odonata: Anisoptera:

Aeshnidae). Entamologische Zeitschrift, 100(19): 353-

365.

Establece la validez de Aeshna absoluta Calvert,

detallando las diferencias con A. diffinis y £. bonariensis,

además de entregar figuras y una clave para su recono-

cimiento y discutir sobre su distribución geográfica.

JURZITZA, G. 1990. Aeshna peralta Ris, 1918, ein syno-

nym von A. veriegata Fabricius, 1775 (Anisoptera:

Aeshnidae). Odonatologica, 19(4): 385-393.

Basado en material de Perú, Chile y Argentina, se esta-

blece una gran variabilidad morfológica de Aeshna varie-

gata F., dentro de la cual el nombre A. peralta Ris

corresponde a un morfotipo, razón por la cual debe ser

considerado como sinónimo.

NOTICIAS

15 GONGRESO BRASILEIRO DE ENTOMOLOGIA,

12-17 marzo de 1995, Caxambú - Minas Geraes, Brasil

En el marco de este Congreso se efectuarán el 6” Encuen-

tro Nacional de especialistas en Fitosanidad y el 2” Sim-

posio de manejo integrado de plagas. El evento es

organizado por la Sociedad Entomológica do Brasil y la

Escola Superior de Agricultura de Lavras. Informaciones

pueden ser solicitadas a: Dr. Américo I. Ciociola,

ESAL/Depto. Fitossanidade, Caixa Postal 37, CEP:

37200-Lavras-MG, Brasil.

MI CONGRESO ARGENTINO DE ENTOMOLOGIA, 3-7

abril de 1995, Mendoza-Argentina

Informaciones acerca de este evento pueden ser solici-

tadas a: Prof. Ing. Agr. José G. García Sáez, Facultad de

Ciencias Agrarias, Almirante Brown 500, (5505 Chacras

de Coria-Mendoza, Argentina.

XXIl CONGRESO COLOMBIANO DE ENTOMOLO-

GIA, 26-28 julio de 1995, Santafé de Bogotá, Colom-

bia

Esta reunión, organizada por la Sociedad Colombiana de

Entomología, tiene como temas centrales:

- Plagas de ornamentales y hortalizas, con énfasis en pla-

gas del suelo

- Entomología médica y veterinaria

Junto a esos temas centrales serán tratados aspectos de:

biodiversidad y conservación, ecología de insectos, ento-

mología aplicada en sus diversos matices (forestal, pro-

ductos almacenados, urbana), entre otros. Fecha límite de

recepción de resúmenes es el 25 de mayo de 1995; ma-

yores informaciones deben ser solicitadas a: Dr. Alberto

Caro, Apartado Aéreo 43672, Sentafé de Bogotá D.C., Co-

lombia (Fax (91) 8429872).

XX INTERNATIONAL GONGRESS OF ENTOMO-

LOGY, August 25-31, 1996, Florence - Italy

Scientific Program

GENERAL STRUCTURE

- Opening Plenary Lecture

- Plenary Symposia

- Sections Organized by Selected Convenors

-= Special Simposia Selected by Section Convenors

- Closing Plenary Lecture

- Audio-visual Sessions

- Poster Sesions

-= Special interest Groups

- Workshops

- Exhibitions

THE SCIENTIFIC PROGRAM WILL BE ARRANGED

IN THE FOLLOWING SECTIONS

1) Systematics and Phylogeny

Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 191-193

2) Zoogeography

3) Morphology

4) Reproduction and Development

5) Cell Biology, Physiology and Biochemistry

6) Insect Neurosciences

7) Insect Immunity

8) Genetics and Evolutionary Entomology

9) Insect Molecular Biology and Genetic Engineering

10) Ecology and Population Dynamics

11) Special Environments Entomology

12) Ethology

13) Social insects

14) Apidology and Sericulture

15) Agricultural Entomology

16) Forest Entomology

17) Tropical Entomotogy

18) Urban and Stored Products Entomology

19) Ecology of Pesticides, Resistance and Toxicology

20) Entomophagous Insects and Biological Control

21) General and Applied Insect Pathology

22) Integrated Pest Management

23) Medical and Veterinary Entomology

24) Biodiversity and Conservation

25) History of Entomology

26) Entomology for the Third Millenium - Critical Issues

CONGRESS PRESIDENT

B. Baccetti

SECRETARY GENERAL

A Vigna Taglianti

NATIONAL ORGANIZING COMMITTEE

B. Baccetti E. Tremblay

M.Cobolli A. Vigna Taglianti

C. Conci R. Zocchi

F. Frilli

SCIENTIFIC PROGRAM COMMITTEE

E. Tremblay (Pres.) F. Le Moli

A. Arzone C. Malva

F. Bin L. Masutti

C. Briolini A. Minelli

L. Bullini S. Ruffo

R, Cavalloro V. Sbordoni

M. Coluzzi S. Turillazzi

R. Dallai G. Viggiani

G. Domenichini

Organizing Secretariat

0.1.C.

Via A. La Marmora, 24

50121 Florence (Italy)

Tel.++39-55.5000631

Fax.++39-55-5001912

Entomologists wishing to propose sectional symposia,

workshops or special interest group meetings should re-

turn the enclosed intent form or write to the Congress Or-

ganizing Secretariat O.I.C. with details. The proposals are

expected to reach the Congress Secretariat by the end of

1998%

192

Rev. Chilena Ent. 21, 1994

LISTA OFICIAL DE LOS SOCIOS HONORARIOS Y TITULARES

DE LA SOCIEDAD CHILENA DE ENTOMOLOGIA 1994

ANGELICA M. AGUILAR V.

ALFONSO AGUILERA P.

ANDRES ANGULO O.

JAIME APABLAZA H.

JAIME ARAYA C.

PATRICIO ARRETZ V.

GERARDO ARRIAGADA S.

JORGE ARTIGAS C.

JUAN E. BARRIGA T.

MARCOS BEECHE C.

ARIEL CAMOUSSEIGHT M.

ROBERTO CARRILLO L.

MARIA E. CASANUEVA

JORGE CEPEDA P.

MIGUEL CERDA 6G.

ELIZABETH CHIAPPA T.

RAUL CORTES P.

(Socio Honorario)

RENE COVARRUBIAS B.

TOMISLAV CURKOVIC S.

MARIO ELGUETA D.

MARIA ETCHEVERRY C.

DANIEL FRIAS L.

JOSE E. FUENTES

RAUL GODOY H.

CHRISTIAN GONZALEZ A.

ROBERTO H. GONZALEZ

AUDREY A. GREZ

JOAQUIN IPINZA R.

VIVIANA JEREZ R.

LILIAANNE LAMBOROT C.

DOLLY LANFRANCO L.

MARTA LEWIN O.

UNIVERSIDAD AUSTRAL DE CHILE, CASILLA 567, VALDIVIA

INSTITUTO DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS,

CASILLA 58-D, TEMUCO

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, CASILLA 2407-10, CONCEPCION

PONTIFICIA UNIVERSIDAD CATOLICA DE CHILE,

CASILLA 6177, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 1004, SANTIAGO

ALONSO BERRIOS 5831, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, CASILLA 2407-10, CONCEPCION

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 1004, SANTIAGO

SERVICIO AGRICOLA Y GANADERO, CASILLA 4088, SANTIAGO

MUSEO NACIONAL DE HISTORIA NATURAL,

CASILLA 787, SANTIAGO

UNIVERSIDAD AUSTRAL DE CHILE, CASILLA 567, VALDIVIA

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, CASILLA 2407-10, CONCEIPCION

UNIVERSIDAD DE LA SERENA, CASILLA 599, LA SERENA

JUAN MOYA 374, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE PLAYA ANCHA DE CIENCIAS DE LA EDUCACION,

CASILLA 34-V, VALPARAISO

UNIVERSIDAD METROPOLITANA DE CIENCIAS DE LA EDUCACION,

CASILLA 147, SANTIAGO

UNIVERSIDAD METROPOLITANA DE CIENCIAS DE LA EDUCACION

CASILLA 147, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 1004, SANTIAGO

MUSEO NACIONAL DE HISTORIA NATURAL, CASILLA 787, SANTIAGO

IRARRAZAVAL 1628 DPTO. 94, SANTIAGO

UNIVERSIDAD METROPOLITANA DE CIENCIAS DE LA EDUCACION,

CASILLA 147, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 653, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 70061, SANTIAGO

UNIVERSIDAD METROPOLITANA DE CIENCIAS DE LA EDUCACION

CASILLA 147, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 1004, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 2, SANTIAGO (15)

UNIVERSIDAD MAYOR, CAMINO LA PIRAMIDE 5750, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, CASILLA 2407-10, CONCEPCION

UNIVERSIDAD DE CHILE, CASILLA 1004, SANTIAGO

UNIVERSIDAD AUSTRAL DE CHILE, CASILLA 567 VALDIVIA

AV. EL TRANQUE 11397-A, LAS CONDES, SANTIAGO

GILBERTO MONTERO D.

TOMAS MOORE R. :

JUAN C. MORONI B.

JACOBO NUMHAUSER T.

GABRIEL OLALQUIAGA F.

(Socio Honorario)

TANIA OLIVARES Z.

LUIS PARRA J.

LUIS PEÑA G.

ERNESTO PRADO C.

AURORA QUEZADA 6.

RAMON REBOLLEDO R.

RENATO RIPA S.

FRESIA ROJAS A.

LUISA RUZ E.

FRANCISCO SAIZ G.

JAIME SOLERVICENS A.

HAROLDO TORO G.

HECTOR VARGAS C.

CARLOTA VERGARA B.

Noticias 193

CLARO SOLAR 1126, TEMUCO

CARRERA 330, CURICO

SERVICIO AGRICOLA Y GANADERO, CASILLA 4088, SANTIAGO

CASILLA 425, ANCUD

SERVICIO AGRICOLA Y GANADERO, CASILLA 4088, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, CASILLA 2407-10, CONCEPCION

CASILLA 2974, SANTIAGO

INSTITUTO DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS,

CASILLA-439, SANTIAGO

UNIVERSIDAD DE CONCEPCION, CASILLA 2407-10, CONCEPCION

UNIVERSIDAD DE LA FRONTERA, CASILLA 54-D, TEMUCO

INSTITUTO DE INVESTIGACIONES AGROPECUARIAS,

CASILLA 3, LA CRUZ

MUSEO NACIONAL DE HISTORIA NATURAL, CASILLA 787, SANTIAGO

UNIVERSIDAD CATOLICA DE VALPARAISO,

CASILLA 4059, VALPARAISO

UNIVERSIDAD CATOLICA DE VALPARAISO,

CASILLA 4059, VALPARAISO

UNIVERSIDAD METROPOLITANA DE CIENCIAS DE LA EDUCACION,

CASILLA 147, SANTIAGO

UNIVERSIDAD CATOLICA DE VALPARAISO,

CASILLA 4059, VALPARAISO

UNIVERSIDAD DE TARAPACA, CASILLA 287, ARICA

SERVICIO AGRICOLA Y GANADERO, CASILLA 4088, SANTIAGO

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Rev. Chilena Ent.

1994, 21: 195-196

INSTRUCCIONES A LOS AUTORES

Las colaboraciones para la Revista Chilena de

Entomología (publicada anualmente) deberán

corresponder a investigaciones Originales,

inéditas, sobre Entomología en cualquiera de

sus especialidades, aspectos o relaciones, con

las citas bibliográficas o revisión de literatura

necesarias para fundamentar el nuevo aporte, y

con especial referencia a Chile o a la región

Neotropical.

La recepción de trabajos será continua. La

aceptación dependerá de la opinión expresada

por a lo menos dos revisores. La publicación

se hará en estricto orden de recepción, condi-

cionado por su aceptación, dejandose expresa

constancia de las fechas de recepción y acep-

tación definitiva de los manuscritos.

Los trabajos deberán estar escritos a

máquina, a doble espacio, en hoja tamaño

carta, con un margen de 2,5 cm. por lado; cada

hoja se numerará correlativamente y llevará el

apellido de los autores. Los autores de traba-

jos que utilicen impresoras para sus originales,

deberán poner especial atención en cuanto a

que el texto sea absolutamente legible. De-

berá evitarse el uso de neologismos y de abre-

viaturas no aceptadas internacionalmente.

Los autores deberán financiar parte de los

costos de impresión.

Los originales, incluyendo 2 copias, se de-

ben dirigir a:

Editor

Revista Chilena de Entomología

Casilla 21132

Santiago (21), CHILE

Los trabajos redactados en español o inglés,

deben incluir un resumen en ambos idiomas.

La aceptación de aportes redactados en otro

idioma, está sujeta a autorización por parte del

Comité Editorial.

Se sugiere que cada artículo científico cons-

te de las siguientes secciones: Resumen y Ab-

stract, Introducción, Materiales y Métodos,

Resultados, Discusión (pudiéndose refundir

estos últimos), Agradecimientos, Literatura

Citada.

El título debe ser breve, escrito en español e

inglés, y se debe incluir palabras claves (key

words) a continuación de cada resumen.

Los trabajos taxonómicos deben ceñirse a

las recomendaciones del Código Internacional

de Nomenclatura Zoológica; las descripciones

de nuevos taxa deben incluir figuras

adecuadas a tal propósito.

Indique mediante notas marginales en el

texto la localización preferida de Tablas y

Figuras.

Las llamadas al pie de página deberán indi-

carse mediante un número, con numeración

correlativa a lo largo del manuscrito.

Las menciones de autores en el texto de-

berán ser hechas sólo con inicial mayúscula

ej.: González; los nombres de autores de la

Literatura Citada deberán ser escritos con

mayúscula, ej.: GONZALEZ. El término Bi-

bliografía se reserva para aquellos casos en

que se efectúa una recopilación exhaustiva so-

bre un determinado tema.

Ejemplos de menciones de citas bibliográ-

ficas:

FRIAS L., D., 1986. Biología poblacional de

Rhagoletis nova (Schiner) (Diptera: Tephri-

tidae). Rev. Chilena Ent. /3. 75-84.

TORO, H. y F. ROJAS, 1968. Dos nuevas espe-

cies de Isepeolus con clave para las espe-

cies chilenas. Rev. Chilena Ent., 6: 55-60.

GREZ, A.A.; J.A. SIMONETTI y J.H. IPINZA-

REGLA, 1986. Hábitos alimenticios de

Camponotus morosus (Smith, 1858)

(Hymenoptera: Formicidae) en Chile Cen-

tral. Rev. Chilena Ent., /3: 51-54.

Note que se resalta los nombres científicos y

el volumen de la revista. En el caso de títulos

que incluyan nombres genéricos o específicos,

deberá llevar en paréntesis el Orden y la Fa-

milia a que pertenecen, separados por dos pun-

tos. Se aceptará la cita abreviada del nombre

de la Revista (propuesta por sus editores) o en

su defecto el nombre completo de la misma,

cuidando adoptar un criterio uniforme.

196 Rev. Chilena Ent. 21, 1994

Ejemplos de menciones de citas de libros,

capítulos de ellos y publicaciones en prensa:

CLODSLEY-THOPSON, J.L., 1979. El hombre y

la biología de zonas áridas. Editorial

Blumé, Barcelona.

BRITTON E.B., 1979. Coleoptera: In: CSIRO

(ed.), The insects of Australia, pp. 495-621.

Melbourne University Press, Carlton.

BURCKHARDT, D. (en prensa). Jumping plant

lice (Homoptera: Psylloidea) of the temper-

ate Neotropical region. Part. 3: Calophyidae

and Triozidae. Zoological Journal of the

Linnean Society.

BLANCHARD, C.E., 1851. FASMIANOS. /n: C.

Gay (ed), Historia Física y Política de

Chile. Zoología, 6: 23-29. Imprenta de

Maulde et Renou, Paris.

Nótese que en el penúltimo caso no se indica

fecha ni volumen de supuesta publicación.

Las citas en el texto se hacen por la men-

ción del apellido del autor seguido del año de

publicación, separados por una coma. Varios

trabajos de un mismo autor publicados en el

mismo año, deberán diferenciarse con letras

minúsculas (ejemplo: Rojas, 198la, 198lb y

198lc); para citas de trabajos de dos autores se

deben mencionar los apellidos de ambos

(ejemplo: Rojas y Cavada 1979); trabajos de

más de dos autores deberán ser citados por el

apellido del primer autor seguido de et al.,

varios trabajos citados dentro de un paréntesis

deberán ser separados por punto y coma

(ejemplo: Frías, 1986; Toro Rojas, 1968;

Grez et al., 1986 y Rojas £ Cavada, 1979).

La primera vez que se cite en el texto un

nombre científico, deberá llevar el nombre de

su descriptor (ejemplo: Peloridora kuscheli

China, 1955) y en lo posible el año de su des-

cripción. Todas las palabras en latín, incluso

abreviaturas en latín, deberán ser subrayadas.

Gráficos, diagramas, mapas, dibujos y foto-

grafías llevarán la denominación de Figuras

(abreviado como Fig. en el texto); se usará el

término Tabla para designar cualquier con-

junto de datos presentados en forma compacta.

Se deberá proporcionar en una hoja aparte,

un encabezamiento de página (título acortado)

de no más de 80 caracteres, incluyendo espa-

cios y apellido del autor (ejemplo: Guerrero et

al.: Acción parasitaria de himenópteros sobre

Plutella xylostella L.).

Los dibujos deben ser hechos con tinta

china negra y papel diamante o en papel

blanco de buena calidad pudiendo usarse

además, materiales autoadhesivos (letra set u

otros). Las fotografías deberán ser en blanco

y negro, papel brillante y con buen contraste e

intensidad. La impresión a color será de cargo

de los autores.

Las figuras llevarán leyenda corta, precisa y

autoexplicativa y serán mumeradas correlati-

vamente. Para su confección se deberá tener

en cuenta las proporciones de la hoja impresa

de la revista.

Las figuras que excedan el tamaño de la

hoja deberán ser diseñadas considerando la re-

ducción que sufrirá el original. Usar escalas

gráficas.

Las leyendas y explicaciones de figuras de-

berán mecanografiarse en hoja aparte.

Cada ilustración deberá llevar además del

número, el nombre del autor, las cuales deben

escribirse con lápiz grafito en su margen o en

el reverso en el caso de fotografías.

El número de cuadros y figuras debe limi-

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tarse al mínimo indispensable para compren- |

der el texto.

Pruebas de imprenta: el autor recibirá una

prueba que deberá devolver corregida dentro

de los 10 días posteriores a su envío.

Separatas: el o los autores recibirán gratui-

tamente un total de 50 separatas por trabajo.

Si desea un número mayor, deben solicitarse y

cancelarlas anticipadamente. La cantidad adi- [

cional debe ser indicada al devolver las prue- |

bas de imprenta.

CONTENIDO

ASKEVOLD, I.S. 4 R.W. FLOWERS. Glyptosceloides dentatus, a genus and species of Eu-

molpmaemnewto Chile (Coleoptera: Chrysomelidas)

BEECHE C., M.A. y R.S. MUÑOZ G. Primer registro del escolítido del olmo, Scolytus mul-

tistriatus (Musham). (Coleoptera: Scolytidae), en Chile

BENADO SM: vease G:MANRIQUEZ .M. BENADO oo a aa e la e e

BURCKHARDT, D. Generic key to chilean jumping plant-lice (Homoptera: Psylloidea)

mita clusionmoRpotentiallexoticipests .. el ooo boi la II E

MOERBONERE O véase JA: IPINZASREGLA el ali la. laa a oa a

CHIAPPA T., E. Comportamientos precursores de vida social en Apoidea (Hymenoptera) .

CHIAPPA, E. y H. TORO. Comportamiento reproductivo de Centris mixta tamarugalis

(Hymenoptera: Anthophoridae). II Parte: Nidificación y estados inmaduros .........

DELFINO, M. A. Descripción de dos nuevas especies de Uroleucon (Homoptera: Aphidi-

TH) rocosa Sa E A A

ELGUETA, M. y D. LANFRANCO. La familia Aulacidae en Chile (Hymenoptera:

IVECO) e A A o E A da

ESTE ease o SOLERVICENS y M' ELGUETA a e

EBRORITECUIES A vEase E TORO y 5. ELORTEGUI Na a oa ela e dea

IO NERS ARSS case LoS: ASKEVOLD de R.S. FLOWERS+ 0. o o

GODOY-HERRERA, R. Desarrollo y genética de patrones de movimiento en larvas del

DTO FOSO e o ME ea e cla SUE iaed io: els IEA IEA O ARAN

HAITLINGER, R. Four new larval mites (Acari: Trombidiidae: Eutrombidiinae) ectoparasi-

Haontcarabids (Insecta: Coleoptera: Carabidac) a ene daa a

IBARRA-VIDAL, H. véase L.E. PARRA y HSIBARRAS VIDA e dd la ESAS

IPINZA-REGLA, J.H.; C. CARBONELL y M.A. MORALES. Hermetismo en sociedades mixtas

dehornisas (Elymenoptera: Formicidae) en nidos artificiales.

IMONENANCO NDA E ase MM: ELGUETA y D: LANERANCO 0. bas a la a

MANRÍQUEZ, G. 4% M. BENADO Echinopsis chilensis (Friedrich et Rowland): an endemic

Exec dinerito DIOS OpAMapayan BRAIN ENS:

MARTÍNEZ, A. y L.E. PEÑA G. Una nueva especie de Oogenius Solier (1851) de Chile

(Calera IC A

MOORE R., T. Un Nuevo Mastogenius para Chile (Coleoptera: Buprestidae) ...........

HORES ANIMA case Dal. IPINZA=REGLA venal a o ao aleta daa le

MINO ARESyEase MA: BEECHE €. y RS: MUÑOZ ooo

- PARRA, L.E. y H. IBARRA-VIDAL. Descripción de los estados inmaduros y notas biológi-

cas sobre Metaphatus ochraceus (Lepidaptera: Palaephatidae), defoliador del notro

CEPNDIAPITE: EOI A A A E e O O a da

HEN CAIE vease AYIVMTARTINEZ Y LES PENA Gia a a dee aida

ROIG-JUÑENT, S. Las especies chilenas de Cnemalobus Guérin-Meneville 1838 (Coleop-

cra Carabidas: Ene mal a o ri ES eE

- RUIZ-DUBREUIL, G. Arquitectura genética y adecuación biológica de la oviposición agre-

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ad ENDOSO P REA MELO Sastre Se

SOLERVICENS, J. y M. ELGUETA. Insectos de follaje de bosques pantanosos del Norte

CMICO, AO A o toto alba opa

TORO, H. y S. ELORTEGUI. Ajuste genital en la cópula de Thynninae (Hymenoptera:

nphudas) Bart ME laphropiera NE mMipenaas (O

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